FR 2656101 A1 19910621 FR 9013894 A 19901109 DISPOSITIF D'ESSAI IMMUNOCHIMIQUE, ET MARQUEUR IMMUNOCHIMIQUE POUR CE DISPOSITIF ET SON PROCEDE DE PREPARATION On a décrit divers procédés pour détecter la pré- sence d'un analyte (substance faisant l'objet d'une ana- lyse) dans un échantillon de fluide biologique, grâce à l'utilisation de l'immunochimie Par exemple, dans ce que l'on appelle le procédé "sandwich", un analyte cible, comme un antigène, est pris en sandwich entre un anticorps marqué et un anticorps immobilisé sur un sup- port solide On effectue l'essai en observant la pré- sence d'un complexe d'antigène lié et d'anticorps marqué et en en déterminant la quantité Dans le procédé d'immuno-essai par compétition, un anticorps fixé sur une surface solide est mis en contact avec un échantil- lon contenant une quantité inconnue d'un analyte anti- gène et avec un antigène marqué du même type On déter- mine ensuite la quantité d'antigène marqué fixé sur la surface solide, ce qui donne une mesure indirecte de la quantité d'analyte antigène dans l'échantillon. Puisque ces procédés, ainsi que d'autres discutés ci-dessous, permettent de détecter aussi bien des anti- corps que des antigènes, on les appelle généralement "essais immunochimiques ligand-récepteur" ou, plus sim- plement, "immuno-essais". Les dispositifs d'immuno-essais en phase solide, qu'ils soient du type sandwich ou du type par compéti- tion, permettent une détection sensible d'un analyte dans un échantillon de fluide biologique comme du sang ou de l'urine Les dispositifs d'immunoessais en phase solide comprennent un support solide sur lequel est fixé un élément d'une paire ligand-récepteur, habituellement un anticorps, un antigène ou un haptène Au début, les supports solides revêtaient habituellement les formes de plaques, de tubes ou de perles de polystyrène, bien con- nues dans les domaines des essais radio-immunologiques et des essais immuno-enzymatiques Plus récemment, on a utilisé comme supports solides un certain nombre de matériaux poreux, comme le nylon, la nitrocellulose, l'acétate de cellulose, les fibres de verre et d'autres polymères poreux. On a décrit un certain nombre de trousses intégra- les d'immuno-essais, qui font appel à des matériaux poreux comme phases solides supportant des composants immunochimiques comme des antigènes, des haptènes ou des anticorps Ces trousses sont généralement de conception "à tige plongeante", "à écoulement traversant" ou "là migration". Dans les formes les plus courantes d'essais du type à tige plongeante, tels que représentés par les trousses de tests domestiques de détection d'ovulation et de grossesse, des composants immunochimiques tels que des anticorps sont fixés sur une phase solide Le dispositif d'essai est plongé, pour une incubation, dans un échan- tillon suspecté de contenir un analyte antigène inconnu. On ajoute alors un anticorps marqué par une enzyme, soit en même temps, soit après une période d'incubation Le dispositif est ensuite lavé, puis introduit dans une seconde solution contenant un substrat pour l'enzyme. L'enzyme de marquage, si elle est présente, interagit avec le substrat, en provoquant la formation de produits colorés qui se déposent sous forme d'un précipité sur la phase solide ou bien provoquent un changement visible de la couleur de la solution de substrat Dans EP-A- O 125 118, Baxter et coll décrivent un tel immuno-essai à tige plongeante du type sandwich Dans EP-A-O 282 192, Kali et coll décrivent un dispositif à tige plongeante, à utiliser dans des essais du type par compétition. On a conçu les dispositifs d'immuno-essais du type à écoulement traversant pour s'affranchir des nécessités d'une incubation poussée et d'étapes ennuyeuses de lavage, associées aux essais à tige plongeante Dans le brevet US No 4 632 901, Valkirs et coll décrivent un dispositif comprenant un anticorps (spécifique d'un ana- lyte antigène cible) fixé sur une membrane poreuse ou sur un filtre, auquel on ajoute un échantillon liquide. Quand le liquide s'écoule à travers la membrane, l'ana- lyte cible se lie à l'anticorps L'addition de l'échan- tillon est suivie de l'addition d'un anticorps marqué. La détection visuelle de l'anticorps marqué donne une indication de la présence de l'analyte antigène cible dans l'échantillon. Dans EP-A-O 299 359, Korom et coll décrivent une variante d'un dispositif à écoulement traversant, dans laquelle l'anticorps marqué est incorporé dans une mem- brane qui joue le rôle d'un système de libération de réactifs. Le fait que les dispositifs d'immuno-essais des types à tige plongeante et à écoulement traversant exi- gent de multiples étapes d'addition et de lavage aug- mente le risque de voir un personnel et des utilisateurs domestiques très peu habitués à ces manipulations obte- nir des résultats d'essais erronés. Dans les essais du type à migration, une membrane est imprégnée avec les réactifs nécessaires à la réali- sation de l'essai Une zone de détection de l'analyte est ménagée, dans laquelle l'analyte marqué est fixé et un indice de résultat de l'essai est lu Voir par exem- ple le brevet US No 4 366 241 de Tom et coll et la demande EP-A-0 143 574 de Zuk. Toutefois, la sensibilité des essais du type à migration est souvent réduite par la présence ou la for- mation, dans l'échantillon, de composants solides indé- sirables qui empêchent le passage de l'analyte marqué vers la zone de détection La sensibilité de l'essai diminue également quand on utilise une quantité trop importante d'échantillon de liquide dans les dispositifs d'essai à migration. Les dispositifs d'essai à migration contiennent habituellement des réactifs qui ont été fixés à des mar- queurs colorés, ce qui permet la lecture visuelle des résultats de l'essai, sans addition de substances sup- plémentaires Voir par exemple le brevet US No 4 770 853 de Bernstein, la demande WO-88/08534 de May et coll, et la demande EP-A-0 299 428 de Ching et coll. Parmi ces marqueurs, on peut citer des particules de sol d'or, comme celles décrites par Leuvering dans le brevet US No 4 313 734, des particules de sol de colo- rant, comme celles décrites par Gribnau et coll dans le brevet US N O 4 373 932 et par May et coll dans la demande WO-88/08534, un latex coloré, comme celui décrit par May, supra, et par Snyder dans les demandes EP-A- 0 280 559 et O 281 327, et des colorants enfermés dans des liposomes, comme le décrivent Campbell et coll dans le brevet US No 4 703 017 En ce qui concerne les procé- dés convenables d'immobilisation, ces marqueurs colorés sont généralement limités En outre, ils nécessitent une quantité relativement grande de molécules de ligand et peuvent impliquer des réactifs chers, ce qui augmente les coûts. La présente invention concerne un dispositif pour détecter la présence d'un analyte dans un échantillon de fluide biologique, grâce à l'utilisation de réactions immunochimiques ligand-récepteur et de matériaux-filtres spécialement choisis, traités et disposés La nature de l'invention apparaîtra à la lecture de la description suivante et des dessins annexés, dans lesquels: la Figure 1 est une vue en coupe d'un dispositif d'essai monodirectionnel typique; la Figure 2 est une vue en coupe d'un second mode de réalisation d'un dispositif d'essai monodirectionnel; la Figure 3 est une vue en coupe d'un dispositif bidirectionnel typique; la Figure 4 est une vue en perspective d'un dispo- sitif d'essai, tel que représenté sur la Figure 2 (indi- qué par la silhouette en pointillés), enfermé dans un étui en matière plastique muni d'une ouverture unique; la Figure 5 est une vue de dessus d'un dispositif d'essai multidirectionnel; et la Figure 6 est une vue en perspective d'un dispo- sitif d'essai tel que représenté sur la Figure 2 (indi- qué par la silhouette en pointillés), enfermé dans un étui en matière plastique muni de deux ouvertures. Si l'on se reporte maintenant à la Figure 1, on voit un tampon réservoir 10, un élément filtre 12 et une membrane 16 à effet de mèche, qui contient, dans une zone indicatrice définie 18, une substance immobilisée, le tout étant disposé sur un support 20 Le tampon réservoir 10, qui peut s'étendre au-delà du support 20, présente une porosité et un volume suffisants pour rece- voir et contenir un échantillon liquide sur lequel on va réaliser l'essai L'élément filtre 12 est adjacent au tampon réservoir 10 et est en contact avec lui sur une surface relativement petite, par rapport au volume du tampon 10, de façon à régler le passage de l'échantillon liquide, sortant du tampon réservoir 10, dans l'élément filtre 12. Dans la zone définie 18 de la membrane 16 à effet de mèche, se trouve une substance immobilisée qui peut fixer tout complexe ligand-récepteur particulier contenu dans l'échantillon traversant l'élément filtre 12. Dans ce mode de réalisation, un réactif pouvant donner un complexe ligandrécepteur spécifique est ajouté à l'échantillon, dans lequel il réagira pour for- mer le complexe (si l'échantillon contient l'analyte approprié), et l'échantillon est ensuite mis en contact avec le tampon réservoir 10 L'échantillon migre à tra- vers l'élément filtre 12, o sont piégés tous les compo- sants indésirables éventuellement présents dans l'échan- tillon, et celui-ci poursuit sa migration en pénétrant dans la membrane 16 à effet de mèche L'analyte marqué, s'il est présent, est fixé dans la zone indicatrice 18, o il produit un signal visuellement détectable. Dans le mode de réalisation représenté sur la Figure 2, il y a, en plus du tampon réservoir 10, de l'élément filtre 12 et de la membrane 16 à effet de mèche, un second élément filtre 14 qui est disposé sur le support 20 Le tampon réservoir 10 présente une poro- sité et un volume suffisants pour recevoir et contenir un échantillon liquide sur lequel on va réaliser l'essai Le premier élément filtre 12 est adjacent au tampon réservoir 10 et est en contact avec lui sur une surface relativement petite, de façon à régler le pas- sage de l'échantillon liquide, sortant du tampon réser- voir 10, dans le premier élément filtre 12 Dans ce mode de réalisation, un réactif capable de produire un com- plexe spécifique ligand-récepteur imprègne uniformément tout le premier élément filtre 12 Quand l'échantillon liquide sort du tampon réservoir 10, il entre en contact avec le réactif qui imprègne le premier élément filtre 12, o il va réagir pour former le ou les complexes spé- cifiques ligand-récepteur (si l'échantillon contient le ou les analytes appropriés) Grâce à l'utilisation du premier élément filtre comme système de libération de réactif, il n'est plus nécessaire d'effectuer une étape séparée d'addition de réactif. Le second élément filtre 14, adjacent au premier élément filtre 12 et en position distale par rapport au tampon réservoir 10, a pour fonction de permettre le passage de tout complexe spécifique ligand-récepteur contenu ou formé dans l'échantillon liquide, tout en empêchant le passage des composants plus volumineux con- tenus dedans, ces composants pouvant être soit présents dans l'échantillon original, soit formés par la suite, par exemple dans le premier élément filtre 12. La membrane 16 à effet de mèche est adjacente au second élément filtre 14 et en position distale par rap- port au premier élément filtre 12 La membrane 16 à effet de mèche présente une porosité et un volume suffi- sants pour absorber une proportion importante de l'échantillon introduit dans le tampon réservoir 10, après passage à travers le premier élément filtre 12 et le second élément filtre 14. Dans la zone définie 18 de la membrane 16 à effet de mèche, est disposée une substance immobilisée dont le rôle est de fixer tout complexe spécifique ligand- récepteur formé et contenu dans l'échantillon traversant le premier élément filtre 12 et le second élément filtre 14. Lors de l'utilisation, un échantillon liquide est appliqué sur le tampon réservoir 10 du dispositif repré- senté sur la Figure 2 L'échantillon migre à travers le premier élément filtre 12, dans lequel les analytes cibles, s'il y en a dans l'échantillon, se lient au réactif marqué L'échantillon poursuit sa migration à travers le second élément filtre 14, dans lequel est piégé tout composant indésirable éventuellement présent dans l'échantillon, et pénètre ensuite dans la membrane 16 à effet de mèche L'analyte marqué, s'il y en a, se fixe alors sur la zone indicatrice 18, en y produisant un signal visuellement détectable. En variante, on peut effectuer des essais immuno- statiques en déposant l'échantillon sur le second élé- ment filtre 14 du dispositif représenté sur la Figure 2. On introduit ensuite une solution tampon dans le tampon réservoir 10, et cette solution migre à travers le pre- mier élément filtre 12, en reconstituant les réactifs marqués La solution et les réactifs migrent à travers le second élément filtre 14, dans lequel l'analyte cible, s'il y en a, se lie aux réactifs marqués, et pénètrent ensuite dans la membrane 16 à effet de mèche. L'analyte marqué, s'il y en a, se fixe alors dans la zone indicatrice 18, ce qui donne un signal visuellement détectable. Si l'on se reporte maintenant à la Figure 3, on y voit un tampon réservoir commun 110, des premiers élé- ments filtres 112 A et 112 B, des seconds éléments filtres 114 A et 114 B, et des membranes 116 A et 116 B à effet de mèche, qui contiennent des substances immobilisées, dis- posées dans les zones indicatrices définies 118 A et 118 B, le tout étant disposé sur le support 120 Le tam- pon réservoir commun 110 présente une porosité et un volume suffisants pour recevoir et contenir un échantil- lon liquide sur lequel on va réaliser l'essai Les pre- miers éléments filtres 112 A et 112 B sont adjacents au tampon réservoir commun 110 et sont en contact avec celui-ci sur une surface relativement petite, par rap- port au volume du tampon 110, afin de régler le passage de l'échantillon liquide depuis le tampon réservoir 110 verts les premiers éléments filtres 112 A et 112 B Un réactif pouvant produire un complexe spécifique ligand- récepteur imprègne uniformément et entièrement les pre- miers éléments filtres 112 A et 112 B Les seconds élé- ments filtres 114 A et 114 B sont adjacents aux premiers éléments filtres 112 A et 112 B respectivement, en posi- tion distale par rapport au tampon réservoir commun 110, et ils ont pour fonction de permettre le passage de tous les complexes spécifiques ligand-récepteur formés dans l'échantillon liquide, mais d'empêcher le passage des composants plus gros contenus dans celui-ci Les membra- nes 116 A et 116 B à effet de mèche présentent une poro- sité et un volume suffisants pour absorber une propor- tion importante de l'échantillon introduit dans le tam- pon réservoir commun 110 Des substances immobilisées, situées dans les zones 118 A et 118 B, ont pour rôle de fixer tout complexe spécifique ligand-récepteur formé. Lors de l'utilisation, on introduit un échantillon liquide dans le tampon réservoir commun 110, l'échantil- lon migre à travers les premiers éléments filtres 112 A et 112 B, dans lesquels les analytes cibles, s'il y en a dans l'échantillon, se lient aux réactifs marqués dont les éléments filtres sont imprégnés, puis il migre à travers les seconds éléments filtres 114 A et 114 B, dans lesquels sont piégés tous les composants indésirables de l'échantillon liquide, et il pénètre ensuite dans les membranes 116 A et 116 B à effet de mèche Les analytes cibles marqués, s'il y en a, sont fixés dans les zones indicatrices 118 A et 118 B Par conséquent, le mode de réalisation de la Figure 3 permet de réaliser simultané- ment et indépendamment un essai sur deux analytes ou deux essais parallèles sur le même analyte, en utilisant dans chaque cas un échantillon unique. Si l'on se reporte à la Figure 4, on y voit un dis- positif d'essai, tel que celui représenté sur la Figure 2, enfermé dans un étui 222 L'étui 222 comporte une ouverture 224, située directement audessus du tampon réservoir 210, et une fenêtre 226, située directement au-dessus de la zone indicatrice 218 et de la zone indi- catrice témoin 228 La fenêtre 226 peut être une simple ouverture ou comporter un matériau transparent qui pro- tège les zones 218 et 228, mais permet un examen visuel. L'échantillon liquide est introduit par l'ouverture 224 et absorbé par le tampon réservoir 210 Il migre ensuite à travers le premier élément filtre 212, qui supporte les réactifs marqués appropriés, puis à travers le second élément filtre 214, dans lequel sont piégés tous les composants indésirables de l'échantillon, et pénètre dans la membrane 216 à effet de mèche dans laquelle l'analyte marqué, s'il y en a, se fixe dans la zone indicatrice 218 Le réactif marqué non lié se fixe dans la zone indicatrice témoin 228 Les deux zones indica- trices 218 et 228 peuvent être observées à travers la fenêtre 226. Si l'on se reporte à la Figure 5, on y voit un sup- port 320, fabriqué en un matériau résistant à l'humi- dité, tel qu'une matière plastique, et divisé en plu- sieurs régions semblables 311 A, 311 B, 311 C, 311 D, 311 E et 311 F par des séparateurs 322 Chaque région comprend un premier élément filtre 312, un second élément filtre 314, et une membrane 316 à effet de mèche, tous disposés sur le support 320 entre les séparateurs 322 Le même réactif ou des réactifs différents peuvent être déposés dans chacun des premiers éléments filtres 312, ce qui permet de réaliser, sur le même échantillon, soit des essais parallèles sur le même analyte, soit plusieurs essais différents Chaque membrane 316 à effet de mèche contient une substance immobilisée, appropriée pour le réactif associé avec elle dans le premier élément fil- tre, et déposée dans la zone indicatrice définie 318 Le tampon réservoir commun 310 sur lequel est déposé il l'échantillon occupe une position centrale par rapport auxdites plusieurs régions. Lors de l'utilisation, un échantillon fluide placé sur le tampon réservoir 310 migre simultanément à tra- vers les premiers éléments filtres 312 dans lesquels les analytes cibles, s'il y en a, se lient aux anticorps marqués L'échantillon traverse ensuite les seconds élé- ments filtres 314 et pénètre dans les membranes 316 à effet de mèche, dans lesquelles les analytes cibles mar- qués, s'il y en a, se lient aux substances correspondan- tes immobilisées dans les zones indicatrices 318, en donnant chacun un signal visuellement détectable. Le mode de réalisation représenté sur la Figure 6 peut être utilisé dans des essais immunostatiques Un dispositif d'essai tel que celui représenté dans la Figure 2 est enfermé dans un étui 522 L'étui 522 com- porte une première ouverture 524 située directement au- dessus du tampon réservoir 510, une seconde ouverture 530 située directement au-dessus du second élément fil- tre, et une fenêtre 526 située directement au-dessus de la zone indicatrice 518 et de la zone indicatrice témoin 528 La fenêtre 526 peut être une simple ouverture, ou elle peut être constituée d'un matériau transparent qui protège les zones 518 et 528, mais permet un examen visuel Lors de l'utilisation, un échantillon (comme du sérum par exemple) est introduit directement sur le second élément filtre 514 par la seconde ouverture 530. Une solution tampon est alors introduite dans le tampon réservoir 510 par la première ouverture 524, et la solu- tion migre à travers le premier élément filtre 512, en reconstituant les réactifs marqués qui s'y trouvent La solution et les réactifs migrent à travers le second élément filtre 514, dans lequel l'analyte cible, s'il y en a, se lie aux réactifs marqués, et pénètrent dans la membrane 516 à effet de mèche L'analyte marqué, s'il y en a, se fixe alors sur la zone indicatrice 518, en don- nant un signal visuellement détectable Le réactif mar- qué non lié se fixe sur la zone indicatrice témoin 528. Les deux zones indicatrices 518 et 528 peuvent être observées à travers la fenêtre 526. En ce qui concerne la configuration générale, les éléments filtres et les tampons sont mis bout à bout ou se chevauchent les uns les autres, de façon à définir une interface pour le passage de l'échantillon Il s'est révélé avantageux que la membrane à effet de mèche pré- sente un rapport surface/épaisseur élevé, alors que l'élément filtre qui lui est adjacent présente un rap- port surface/épaisseur relativement faible Pour garan- tir l'obtention d'une interface adéquate, il est donc avantageux de placer l'élément filtre adjacent à la mem- brane à effet de mèche de telle façon qu'ils se chevau- chent. En incorporant au moins un élément filtre avant la zone indicatrice, on obtient une augmentation de la sen- sibilité par rapport aux essais précédents du type à migration Le filtre, qui a subi de préférence un trai- tement destiné à diminuer son caractère hydrophobe inhé- rent, piège les composants indésirables dans l'échantil- lon fluide et permet à l'analyte marqué de passer sans encombre Par conséquent, une proportion plus élevée de l'analyte est fixée dans la zone indicatrice, et l'on obtient des résultats d'essais plus précis. En outre, si l'on choisit une membrane présentant une texture et une dimension de pores appropriées, on peut faire jouer au second élément filtre le rôle d'un système permettant de maîtriser la lyse cellulaire Par exemple, lors d'un essai immunostatique réalisé sur un échantillon de sang complet, il est avantageux de choi- sir, comme second élément filtre, une membrane qui pré- servera l'intégrité des cellules du sang complet, tandis que le sérum passera au travers Ceci empêche la propa- gation, dans la zone indicatrice, des défauts de colora- tion associés à la lyse des cellules du sang. Quand le dispositif est utilisé pour réaliser un essai immunostatique, cet élément filtre supplémentaire peut également servir à recevoir directement des échan- tillons Généralement, on réalise ces essais sur des échantillons de sang complet ou de sérum, que l'on dépose en taches, directement sur le filtre On intro- duit ensuite une solution tampon dans le tampon réser- voir Des solutions tampons typiques englobent, sans y être limitées, une solution tampon phosphate, du sérum physiologique, un tampon Tris-H Cl et de l'eau Des exem- ples d'anticorps que l'on peut détecter de cette façon englobent, sans y être limités, les anticorps associés au sida, à la rubéole, à l'hépatite et à la Lyme. On évite également, grâce à l'incorporation du tam- pon réservoir dans le dispositif, une autre cause de la diminution de la sensibilité de l'essai, à savoir l'introduction d'une trop grande quantité d'échantillon. En effet, le tampon réservoir peut contenir une grande quantité d'échantillon qui est ensuite libérée réguliè- rement dans le dispositif, grâce à l'efficacité des interfaces entre les zones successives Cet aspect de l'invention la rend particulièrement adaptée, par exem- ple, à une utilisation domestique selon laquelle le dis- positif peut être placé dans un courant d'urine, sans que l'on ait besoin de mesurer la quantité de l'échan- tillon introduite dans le dispositif. Le tampon réservoir, le premier élément filtre, le second élément filtre et la membrane à effet de mèche sont fabriqués en un certain nombre de matières filtran- tes Des matières filtrantes typiques que l'on peut uti- * liser pour le tampon réservoir englobent, sans y être limitées, des matières fixant les protéines de faible poids moléculaire, comme la cellulose, les polyesters, les polyuréthanes et les fibres de verre, et présentant des dimensions de pores situées dans l'intervalle allant de 0, 45 à 60 pm Des matières typiques que l'on peut utiliser pour le premier élément filtre englobent, sans y être limitées, des matières cellulosiques (par exemple le papier Whatman ET 31) ou des fibres de verre, qui pré- sentent des dimensions de pores situées dans l'inter- valle allant de 0,45 à 60 pm Des matières typiques que l'on peut utiliser pour le second élément filtre sont des matières hydrophiles qui englobent, sans y être limitées, les polyuréthanes, les polyacétates, la cellu- lose, les fibres de verre et le nylon, et qui présentent des dimensions de pores situées dans l'intervalle allant de 0,45 à 60 pm Des matières typiques que l'on peut utiliser dans la membrane à effet de mèche englobent, sans y être limitées, le nylon, la cellulose, les poly- sulfones, le poly(difluorure de vinylidène), les acéta- tes de cellulose, les polyuréthanes, les fibres de verre et la nitrocellulose. Tout l'ensemble de tampons et de membranes est fixé sur un matériau solide, qui constitue le support du dis- positif et assure son intégrité Ce support peut être fabriqué à partir d'une mince feuille de verre ou de matière plastique, que l'on découpe aux dimensions appropriées pour y faire tenir tout le dispositif d'essai, tout en assurant une certaine commodité d'emploi pour l'utilisateur du dispositif d'essai. Un autre mode de réalisation de la présente inven- tion permet de détecter des analytes multiples dans un échantillon unique de fluide, grâce à la présence de plusieurs types spécifiques de réactifs marqués et du même nombre de types de réactifs immobilisés correspon- dants Le dispositif peut être agencé de façon mono- directionnelle, avec de multiples réactifs marqués imprégnant un seul premier élément filtre et de multi- ples substances immobilisées correspondantes dans plu- sieurs zones indicatrices définies sur la membrane à effet de mèche Dans un mode de réalisation bidirection- nel ou multidirectionnel, plusieurs jeux de composants comprenant un premier élément filtre, un second élément filtre et une membrane à effet de mèche sont associés à un tampon réservoir commun. Dans chaque cas, les réactifs qui sont incorporés dans le premier élément filtre sont séchés ou lyophili- sés sur ou dans l'élément, afin de pouvoir être recons- titués à la suite du contact avec un échantillon liquide D'autres réactifs utiles pour renforcer la spé- cificité ou pour augmenter le nombre de complexes ligand-récepteur formés et liés, et par conséquent, pour augmenter la sensibilité du dispositif d'essai, peuvent également être contenus dans le tampon filtre ou dans le premier des deux tampons filtres qui contiennent égale- ment le réactif Ces réactifs auxiliaires englobent, sans y être limités, des tampons, des détergents et des anticoagulants. Une zone indicatrice supplémentaire, destinée à servir de témoin, placée sur la membrane à effet de mèche, adjacente à la première zone et en position dis- tale par rapport au second élément filtre, constitue, pour le dispositif d'essai, un élément interne de sur- veillance qui indique si l'échantillon liquide a migré tout le long du dispositif Ces zones indicatrices témoins font généralement appel à des anticorps immobi- lisés (par exemple des anti-immunoglobulines), dirigés contre les réactifs marqués qui ont été ajoutés à l'ana- lyte ou incorporés dans le premier élément filtre Si l'on fait référence au mode de réalisation représenté sur la Figure 2, par exemple, un échantillon liquide migre à travers le premier élément filtre dans lequel il reconstitue le réactif marqué et le transporte vers la membrane à effet de mèche Le réactif marqué qui n'est pas lié à l'analyte cible se fixe sur la zone indica- trice témoin, en donnant une indication visuellement détectable de la réalisation correcte de l'essai. Le dispositif d'essai entier, qu'il soit de struc- ture monodirectionnelle, bidirectionnelle ou multidirec- tionnelle, peut être enfermé dans un étui de matière plastique imperméable aux liquides Cet étui comporte normalement une ouverture située au-dessus du filtre réservoir, destinée à recevoir l'échantillon L'étui entier peut être transparent, ou bien une partie de cet étui, située au-dessus de la zone de détection de l'ana- lyte, peut être transparente de façon que l'on puisse observer les résultats de l'essai Les dispositifs enro- bés dans des matières plastiques sont particulièrement utiles et commodes à employer dans des trousses domesti- ques de diagnostic, mais on peut également utiliser d'autres matériaux, comme du papier traité. En outre, la surface supérieure entourant l'ouver- ture peut être courbe et s'étendre vers le bas, de façon à former un réceptacle en forme de coupe dont l'extré- mité se situe au niveau du tampon réservoir, une partie de celui-ci étant encastrée dans ce réceptacle De cette façon, la quantité d'échantillon introduite dans le dis- positif est convenablement ajustée, et l'échantillon ne peut pas contourner un composant quelconque du disposi- tif. On peut utiliser la présente invention aussi bien pour des essais par compétition que pour des essais "sandwich" Dans les essais par compétition, une quan- tité supplémentaire d'un antigène marqué (qui est le même que l'antigène cible) est introduite soit séparé- ment, soit comme constituant du premier élément filtre. Cet antigène marqué entre en compétition avec l'antigène provenant de l'échantillon, pour se fixer sur la zone de détection. Les dispositifs et procédés de diagnostic décrits dans la présente invention peuvent être utilisés pour n'importe quelle réaction ligand-récepteur, et ils conviennent particulièrement pour les réactions mettant en jeu des composants immunochimiques comme des anticorps, des antigènes et des haptènes Dans les essais dans les- quels on souhaite détecter des molécules contenant des ligands, comme des antigènes ou des haptènes, le réactif marqué et la substance immobilisée dans la zone indica- trice sont tous deux des molécules se liant aux ligands. Plus précisément, quand les ligands sont des antigènes, aussi bien les réactifs marqués que les réactifs immo- bilisés sont des anticorps. Les anticorps peuvent être monoclonaux ou poly- clonaux, et l'on connaît bien dans la technique les pro- cédés à utiliser pour les produire Il est préférable d'utiliser des anticorps monoclonaux marqués dans le premier élément filtre et des anticorps polyclonaux dans la zone indicatrice, afin de réaliser la liaison avec une efficacité maximale Toutefois, on peut utiliser toute combinaison d'anticorps polyclonaux et mono- clonaux Dans le cas de trousses pour des tests domesti- ques de grossesse ou de prédiction d'ovulation, on incorpore dans le dispositif des anticorps dirigés res- pectivement contre la gonadotrophine chorionique humaine ou contre les hormones lutéinisantes. Dans les cas o l'on souhaite détecter une molécule se liant à un ligand, comme un anticorps, on utilise un anticorps marqué anti-immunoglobuline G humaine de sou- ris, en guise de réactif qui, comme indiqué, peut être incorporé dans le premier élément filtre, et un antigène spécifique pour l'anticorps cible est immobilisé dans la zone indicatrice On peut utiliser n'importe quel anti- gène naturel ou synthétique, ainsi que des chaînes poly- peptidiques qui ont une activité antigénique Des exem- ples d'antigènes que l'on peut immobiliser dans le dis- positif englobent, sans y être limités, ceux de la rubéole, de la Lyme, du sida, de l'hépatite, de la toxo- plasmose, ainsi que le cytomégalovirus et le virus d'Epstein-Barr. Dans les essais o l'on souhaite détecter simulta- nément plusieurs anticorps dans un échantillon unique, puisque le même anticorps marqué anti-immunoglobuline humaine (réactif) reconnaît tous les anticorps humains présents dans l'échantillon et se lie à chacun d'eux, il est seulement nécessaire d'incorporer des antigènes pour chaque anticorps cible dans des zones indicatrices dis- tinctes sur la membrane à effet de mèche. Les marqueurs utilisés dans le dispositif peuvent être directs ou indirects On préfère les marqueurs directs, parce qu'ils n'exigent pas d'étapes supplémen- taires pour la visualisation des résultats de l'essai. Des exemples de marqueurs directs englobent, sans y être limités, des sols de métaux, des sols de colorants, des latex à particules, des indicateurs colorés, des sub- stances colorées contenues dans des liposomes, et des sols de non-métaux, comme un sol de carbone. Selon un autre aspect, l'invention concerne un mar- queur immunochimique qui est particulièrement bien adapté pour être utilisé dans le dispositif précédent, mais qui peut aussi bien être utilisé dans d'autres essais immunologiques, et en particulier, un marqueur immunochimique dans lequel un ligand immunologique ou des molécules se liant à un ligand sont fixés, directe- ment ou indirectement, à la surface d'un noir de carbone divisé en fines particules. Le marqueur immunologique peut être schématiquement représenté par C-L ou C-X:L, o C représente le noir de carbone divisé en fines particules, "-" représente une fixation par adsorption, L représente un composant con- tenant un ligand ou un motif se liant au ligand, X représente un agent de fixation, et ":" représente une liaison covalente. L peut ne consister qu'en le ligand ou le motif se liant au ligand, auquel cas il est adsorbé directement sur le carbone En variante, le ligand ou le motif se liant au ligand peut être lié à un élément pontant, soit par liaison covalente, soit par liaison immunologique (désignée ci-après par "*") Par exemple, le ligand ou le motif se liant au ligand peut être lié de façon cova- lente à un agent de fixation comme le glutaraldéhyde, qui est à son tour lié de façon covalente à un élément pontant de nature protéinique, comme l'albumine de sérum de bovin (ASB), qui est à son tour adsorbé sur le car- bone De la même façon, l'avidine ou la streptoavidine peut être liée, par l'intermédiaire de la biotine, au ligand ou à la molécule se liant au ligand, et l'avidine ou la streptoavidine peut être adsorbée sur les particu- les de carbone En variante, un anticorps primaire, ser- vant de ligand ou de motif se liant au ligand, est immunologiquement lié à un anticorps secondaire, et l'anticorps secondaire est adsorbé sur les particules de carbone Les structures caractéristiques de l'ensemble C-L englobent donc C-(ligand), C-(molécule se liant au ligand), C(protéine:X:ligand), C-(protéine:X:molécule se liant au ligand), C-( 2 Ab* 1 Ab), et C-(protéine:X:2 Ab* 1 Ab). Selon un second mode de réalisation, un agent de fixation Y est à la fois adsorbé sur la particule de carbone et lié de façon covalente au ligand ou au motif se liant au ligand, pour former un marqueur de formule générale C-Y:L L'agent de fixation Y peut être une espèce moléculaire unique, Y', comme on le décrit ci- dessous de manière plus détaillée, ou bien ce peut être un composite, par exemple de structure (agent de fixation):protéine:(agent de fixation) CY':(ligand), C-Y':(molécule se liant au ligand), C-Y':protéine:X:(ligand), et C-Y':protéine:X:(molécule se liant au ligand). On remarquera que la différence principale entre les deux modes de réalisation est la suivante: dans le premier mode de réalisation, un ligand, une molécule se liant au ligand, ou une protéine (comme un anticorps, de l'albumine de sérum de bovin ou de l'avidine) est adsorbé sur les particules de carbone, alors que dans le second mode de réalisation, un membre d'une classe par- ticulière de composés organiques, servant d'agent de fixation, est adsorbé sur les particules de carbone et lié de façon covalente à un ligand, une molécule se liant au ligand ou une protéine. Les sols de carbone mentionnés ci-dessus peuvent être préparés selon un certain nombre de procédés On peut simplement ajouter le ligand ou les molécules se liant au ligand à une suspension de particules de car- bone, pour produire des structures C-(ligand) et C- (molécule se liant au ligand) Dans les cas o le ligand ou la molécule se liant au ligand est lié indirectement, on peut préparer la structure de particule complète non- carbonée, comme (protéine:X:ligand), (protéine:X: molécule se liant au ligand), ( 20 Ab*la Ab), ou (protéine: X:2 o Ab*la Ab), et l'ajouter ensuite à une suspension de particules de carbone, pour réaliser l'adsorption En variante, la partie terminale de la structure de parti- cule non-carbonée peut d'abord être adsorbée sur les particules de carbone, et le reste de la structure de particule non-carbonée peut alors être introduit par voie chimique Par exemple, une protéine comme l'albu- mine de sérum de bovin, l'avidine ou la streptoavidine peut être adsorbée sur les particules de carbone et ensuite reliée, par exemple à l'aide de glutaraldéhyde pour l'albumine de sérum de bovin ou de biotine pour l'avidine ou la streptoavidine, au ligand ou à la molé- cule se liant au ligand De façon similaire, un anti- corps N 2 peut être adsorbé sur les particules de car- bone, et un anticorps N 1 peut ensuite y être fixé de façon immunologique. Les réactifs de fixation Y' convenables pour un ligand se fixant de façon covalente et les molécules se liant au ligand comme des haptènes, des antigènes ou des anticorps, ou pour des groupes pontants de protéines se fixant de façon covalente, englobent imides, azides, isothiocyanates, imidoesters et dialdéhydes, comme par exemple le maléimide, le succinimide, le phénylazide, le glutaraldéhyde, un N-hydroxysuccinimidoester, le phényl- isothiocyanate, l'acide 4,4 '-diisothiocyanatostilbène- 2,2 '-disulfonique, le 4-N,N-diméthylamino-azobenzène-4 '- isothiocyanate, l'isothiocyanate de fluorescéine, l'iso- thiocyanate de rhodamine, etc. Comme dans le cas du premier mode de réalisation, la structure complète de particule non-carbonée, prépa- rée par réaction du ligand (ou de la molécule se liant au ligand), d'une protéine pontante quelconque et d'un agent de fixation, peut être adsorbée sur la surface des fines particules de noir de carbone En variante, le réactif de fixation peut d'abord être adsorbé seul sur les fines particules de noir de carbone, puis lié de façon covalente au ligand, à la molécule se liant au ligand et/ou à la protéine pontante. Dans n'importe lequel des modes opératoires ci- dessus, il est généralement souhaitable d'ajouter un adjuvant de mise en suspension à la suspension aqueuse de fines particules de noir de carbone, comme par exem- ple un polyalkylèneglycol ou un polysaccharide Comme on le verra cidessous, des substances similaires sont ensuite ajoutées comme agent protecteur, après fixation du ligand immunologique ou des molécules se liant au ligand aux fines particules de noir de carbone Par con- séquent, la quantité ajoutée lors de cette étape est relativement faible, et c'est généralement celle qui suffit seulement pour aider à la mise en suspension des particules de carbone. On fait ensuite subir au réactif de fixation, simultanément ou l'une après l'autre, (i) une réaction de liaison covalente avec le ligand immunologique ou les molécules se liant au ligand, et (ii) une adsorption sur les fines particules de noir de carbone Bien que cela dépende du réactif de fixation particulier utilisé, la réaction de fixation est généralement effectuée en plu- sieurs heures, à des valeurs de p H d'environ 7,0 à envi- ron 9,5. On peut utiliser divers noirs de carbone en fines particules, disponibles dans le commerce, comme Monarch 1000, 120 ou 880, Vulcan XC 72 ou XC 72 R, ou encore Regal 250 R ou 500 R On peut facilement déterminer le caractère convenable de n'importe quelle source particulière, en homogénéisant le matériau dans un tampon et en mesurant la densité optique. De préférence, les fines particules de noir de car- bone, liées de façon covalente ou passive au ligand ou à la molécule se liant au ligand, subissent un traitement avec un agent protecteur du type polyalkylèneglycol ou polysaccharide, qui a pour but de minimiser leur carac- tère hydrophobe et de maximiser leur aptitude à la dis- persion Des matériaux convenant pour cet enrobage sont des polyéthylèneglycols présentant une masse moléculaire d'environ 100 à environ 20 000, de préférence d'environ 5000 à environ 12 000, et des polysaccharides protec- teurs comme un dextrane présentant une masse moléculaire d'environ 10 000 à environ 500 000, de préférence d'environ 10 000 à environ 50 000 On peut facilement réaliser cet enrobage en mettant le noir de carbone lié en contact avec une solution aqueuse à 0,5 5 % p/v de polyéthylèneglycol ou de dextrane. Dans un autre mode de réalisation, le marqueur immunochimique subit un traitement avec au moins un tensioactif ionique ou non, biologiquement acceptable, comme un sel de triméthyl-(alkyl à longue chaîne)- ammonium, du désoxycholate de sodium, les produits Triton, Tween, etc, dans l'intervalle de concentration allant d'environ 0,01 à environ 0,5 % Apres chacun de ces traitements, qui peuvent être effectués à plusieurs reprises, avec des détergents de types identiques ou différents, on lave le marqueur immunochimique pour éli- miner l'excès de détergent. Le marqueur immunochimique résultant peut ensuite être mis en suspension dans un milieu aqueux Ces sus- pensions aqueuses de marqueur immunochimique sont parti- culièrement utiles dans la fabrication de dispositifs d'essais immunologiques, aussi bien ceux de la présente invention que ceux présentant d'autres structures De préférence, la suspension aqueuse comprend au moins un tampon qui a pour fonction de fournir un p H auquel le ligand immunologique marqué ou la molécule se liant au ligand est stable; par exemple, un p H situé dans l'intervalle allant d'environ 6 à environ 9, et de pré- férence d'environ 6,5 à environ 8,5. Les exemples suivants servent à illustrer plus avant la nature de cette invention, mais ne doivent pas être compris comme en limitant le cadre. Essai de Sensibilité Dans les exemples suivants, on détermine les sensi- bilités en préparant des solutions standard de gonado- trophine chorionique humaine, à des concentrations de 25 m UI/ml, 50 m UI/ml, 75 m UI/ml et 100 m UI/ml On intro- duit des échantillons de 0,15 à 0,20 ml des solutions standard dans le dispositif d'essai, et on évalue la sensibilité de celui-ci par sa capacité à détecter une concentration donnée de gonadotrophine chorionique humaine. Exemple 1 A Préparation du Marqueur Des particules de sol d'or sont dissoutes dans 750 ml d'eau distillée que l'on porte ensuite à l'ébul- lition On ajoute de l'acide hydroaurique ( 70 à 75 mg), et on poursuit l'ébullition pendant 5 minutes Du citrate de sodium ( 80 mg), dissous dans 10 ml d'eau dis- tillée, est versé dans la solution d'or, et on fait bouillir la solution pendant 5 autres minutes Après avoir laissé la solution refroidir à la température ambiante, on en ajuste le p H à une valeur proche du point isoélectrique (déterminé par électrophorèse sur gel) pour l'anticorps monoclonal dirigé contre la gona- dotrophine chorionique humaine On ajoute 20 mg de cet anticorps monoclonal à la solution, que l'on agite pen- dant 2 heures à la température ambiante On ajoute 705 mg d'albumine de sérum de bovin, et on agite la solution continuellement pendant environ 12 heures à la température ambiante On récupère le conjugué d'or col- loïdal et d'anticorps monoclonal par centrifugation à 000 t/min dans une centrifugeuse GSA pendant 20 minu- tes, on jette le surnageant et on met le culot résultant en suspension dans 30 ml d'une solution tampon de phos- phate (p H 7,4) contenant 1 % d'albumine de sérum de bovin On soumet ensuite cette suspension à une centri- fugation à 16 000 t/min pendant 15 minutes dans une cen- trifugeuse Sorvall SS-34 On jette à nouveau le surna- geant et on met le culot en suspension dans 15 ml de solution à 1 % d'albumine de sérum de bovin Après un bref traitement aux ultrasons, on filtre la suspension à travers un filtre de 0,2 pm. B Préparation du Dispositif On découpe un échantillon de membrane de nylon pré- activée (Pall Immunodyne), présentant une dimension de pores de 5 pim, aux dimensions de 180 mm x 25 mm, et on le fixe au bas d'une plaque mince de matière plastique ( 100 mm x 180 mm), en guise de membrane à effet de mèche On définit sur la membrane une zone indicatrice, o est immobilisé un anticorps, en pulvérisant, sur une ligne située à environ 1,5 cm du bas, à l'aide d'un appareil Camag Linomat IV, 36 pl d'une solution tampon de phosphate de sodium 0,1 M (p H 7,6) contenant 3 mg/ml d'anticorps de mouton anti-gonadotrophine chorionique humaine (h CG) et 5 % de saccharose Après pulvérisation, on sèche la membrane à 370 C pendant 30 minutes, puis on la traite avec une solution tampon de phosphate de sodium 0,1 M contenant 2 % de lait en poudre dégraissé (Carnation) et 2 % de saccharose La membrane est ensuite lavée avec du tampon de phosphate de sodium 0,1 M contenant 2 % de saccharose, et on la laisse reposer à température ambiante pendant environ 12 heures pour la faire sécher Le support et la membrane à effet de mèche peuvent être conservés dans un dessiccateur jusqu'au traitement suivant. On fait subir à deux membranes de cellulose (Whatman ET 31) un traitement préalable par une solution tampon de phosphate de sodium 0,1 M (p H 7,4) contenant 0,1 % d'albumine de sérum de bovin, 0,5 % de lait en poudre dégraissé, 2 % de saccharose et 0,05 % d'azoture de sodium, et on les fait ensuite incuber pendant 30 minutes à la température ambiante. On prépare le second élément filtre et le tampon réservoir en faisant sécher les deux membranes de cellu- lose ayant subi le traitement préalable, dans un dessic- cateur sous vide, pendant 1 heure à la température ambiante. On prépare le premier élément filtre en faisant incuber un morceau rectangulaire de membrane de cellu- lose (Schleicher & Schuell), mesurant 5 mm x 180 mm, à la température ambiante pendant 30 minutes dans une solution de conjugué d'or colloïdal et d'anticorps mono- clonal anti-gonadotrophine chorionique humaine dans du tampon de phosphate de sodium 0,1 M (p H 7,6) contenant % de saccharose La membrane est ensuite placée sur une plaque de verre et séchée par voie thermique, à 360 C, sous vide constant, dans un appareil de lyophili- sation, puis conservée au sec dans un dessiccateur jus- qu'a ce que l'on s'en serve. Le premier élément filtre est fixé en position adjacente au second élément filtre, et le second élément filtre est fixé au support en matière plastique, en position adjacente à la membrane à effet de mèche. Enfin, le tampon réservoir est fixé en position adja- cente au premier élément filtre La plaque de matière plastique est ensuite découpée en plusieurs bandes de mm de long sur 7,5 mm de large, de sorte que chacune contient, alignés, un tampon réservoir, un premier élé- ment filtre, un second élément filtre et une membrane à effet de mèche. Exemple 2 On suit le même protocole que dans l'Exemple 1 B, sauf que le matériau utilisé pour la membrane à effet de mèche est une membrane de cellulose (Schleicher & Schuell) présentant une dimension de pores de 12 pm. Après une pulvérisation d'un anticorps selon une ligne, on place la membrane dans un dessiccateur pendant 24 heures pour assurer au maximum la fixation de l'anti- corps sur la membrane On fait ensuite incuber la mem- brane dans un tampon de blocage, c'est-à-dire un tampon de borate 0,1 M contenant 1 % d'albumine de sérum de bovin, 0,5 % de lait en poudre dégraissé, 5 % de tréha- lose, 0,05 % de Tween 20, et 0,05 % d'azoture de sodium (p H 8,5 9,0) La membrane bloquée est séchée à nouveau dans un dessiccateur sous vide, pendant 1 heure, puis conservée dans un dessiccateur ordinaire jusqu'à ce qu'on l'incorpore dans le dispositif d'essai. Exemple 3 On prépare une bande conformément au protocole de l'Exemple 1 B. * Quand on place le tampon réservoir dans un jet d'urine, un signal détectable commence à apparaître dans la zone indicatrice au bout d'environ 3 minutes La sensibilité de l'essai vaut environ 50 m UI/ml. Exemple 4 On prépare une bande conformément au protocole de l'Exemple l B, mais en omettant le premier élément filtre et le tampon réservoir On introduit la bande dans un tube contenant 100 pl d'urine de femme et 10 pi de con- jugué d'or colloïdal et d'anticorps monoclonal anti- gonadotrophine chorionique humaine, préparé conformément à l'Exemple 1 Quand le liquide migre le long de la bande, un signal détectable apparaît dans la zone indi- catrice en 2 minutes environ, et ce signal devient plus intense au moment o le liquide atteint le bout de la bande (environ 4 minutes) La sensibilité de ce proto- cole d'essai pour la gonadotrophine chorionique humaine présente vaut 25 m UI/ml. Exemple 5 On prépare une bande d'essai, essentiellement selon le protocole de l'Exemple l B, mais en traitant le pre- mier élément filtre avec un anticorps anti-gonadotrophine chorionique humaine, marqué de la façon suivante On lave à trois reprises avec de l'eau distillée, par microcentrifugation, 0,1 ml d'une suspension à 10 % de particules colorées de latex de polystyrène, disponibles dans le commerce et dont la taille vaut de 0,1 à 0,3 pm. Le culot final est mis en suspension dans 2 ml de solu- tion tampon de chlorhydrate de glycine 0,1 M contenant 1 mg d'albumine de sérum de bovin Après environ 12 heu- res d'incubation à la température ambiante dans un cul- buteur, on lave la suspension de latex à trois reprises avec une solution tampon de phosphate de sodium 0,1 % (p H 6,8) pour éliminer l'excès d'albumine de sérum de bovin On complète la suspension résultante à 2 ml avec la même solution tampon de phosphate, et on ajoute une solution à 25 % de glutaraldéhyde, jusqu'à une concen- tration finale de 1 % de celui-ci On fait incuber l'échantillon pendant 3 heures à la température ambiante, puis on le lave trois fois de plus avec la même solution tampon On ajoute 100 pg d'anticorps anti- gonadotrophine chorionique humaine à 2 ml de la suspen- sion de latex, et on fait incuber le tout pendant 3 heu- res supplémentaires à la température ambiante On ajoute alors de la glycine jusqu'à une concentration finale de 2 % Après 1 heure supplémentaire d'incubation, on lave la suspension de latex à trois reprises avec la même solution tampon, et on la met en suspension dans la même solution tampon contenant 2 % d'albumine de sérum de bovin La suspension est soumise à un bref traitement aux ultrasons, puis conservée à 40 C jusqu'à ce qu'on l'utilise. Exemple 6 On prépare une bande selon le protocole de l'Exemple 1 B, en omettant le premier élément filtre et le tampon réservoir La bande d'essai est ensuite intro- duite dans un tube à essais contenant 5 pl d'anticorps anti-gonadotrophine chorionique humaine, marqué confor- mément au protocole de l'Exemple 5, dans 100 pl d'urine de femme Quand le liquide migre le long de la bande, un signal détectable apparaît dans la zone indicatrice en 2 minutes environ, et ce signal devient plus intense au moment o le liquide atteint l'extrémité de la bande (environ 4 minutes) La sensibilité de cet essai pour la gonadotrophine chorionique humaine vaut 25 m UI/ml. Exemple 7 On homogénéise 10 mg de particules de carbone Vulcan XC 72 dans 2 ml de solution tampon de Tris- chlorhydrate 20 m M (p H 6,8) contenant 40 m M de chlorure de sodium et 2 % de dextrane 9400 Après 2 heures d'incubation à la température ambiante, on ajoute à cette solution une solution de 5 mg d'isothiocyanate de fluorescéine dans 1 ml de solution tampon de Tris- chlorhydrate On soumet le mélange à un bref traitement aux ultrasons, et on le fait incuber pendant environ 12 heures à la température ambiante Après incubation, on ajoute 20 ml d'une solution tampon de phosphate de sodium 0,1 M (p H 7,6) et du chlorure de sodium 0,1 M à la solution de carbone, et on soumet ensuite le tout à une centrifugation à 15 000 t/min à 40 C On répète trois fois cette étape, et le culot résultant est mis en sus- pension dans 20 ml de tampon de phosphate Après un bref traitement aux ultrasons, on ajoute à la suspension 3 mg d'un anticorps monoclonal contre la gonadotrophine cho- rionique humaine, et on fait incuber le mélange pendant 6 heures à la température ambiante On soumet ensuite à trois reprises le mélange à une centrifugation à 15 000 t/min, pour éliminer l'anticorps qui n'a pas réagiLe culot final est mis en suspension dans 20 ml de solution tampon de Hepes 0,1 M (p H 7,5) contenant 1 % d'albumine de sérum de bovin, 5 % de saccharose, 0,1 M de chlorure de sodium et 0,05 % d'azoture de sodium On ajoute du bromure de cétyltriméthylammonium jusqu'à obtenir une concentration finale de 0,025 % On fait ensuite incuber le tout pendant 30 minutes, puis on effectue une centri- fugation à 15 000 t/min Le culot résultant est mis en suspension dans 20 ml de solution tampon de Hepes 0,1 M (p H 7,5) contenant 1 % d'albumine de sérum de bovin, 5 % de saccharose, 0,1 M de chlorure de sodium et 0,05 % d'azoture de sodium, puis on effectue un bref traitement aux ultrasons et on ajoute à la suspension du désoxalate de sodium jusqu'à une concentration finale de 0,1 %, après quoi on fait incuber le tout pendant 30 minutes à la température ambiante et on effectue une nouvelle cen- trifugation Le culot est à nouveau mis en suspension dans 20 ml de solution tampon de Hepes 0,1 M (p H 7,5) contenant 1 % d'albumine de sérum de bovin, 5 % de sac- charose, 0,1 M de chlorure de sodium et 0,05 % d'azoture de sodium, et on soumet la suspension à un bref traite- ment aux ultrasons. Ce sol de carbone est incorporé, à la place de l'or colloïdal, dans le premier élément filtre de bandes d'essais préparées selon l'Exemple l B, le tampon réser- voir étant omis Les bandes d'essais sont séchées dans un appareil de séchage sous vide pendant environ une heure, puis conservées dans un dessiccateur à la tempé- rature ambiante jusqu'à ce qu'on les utilise. Pour effectuer des essais sur l'hormone lutéini- sante ou la gonadotrophine chorionique humaine, on dis- perse 100 pl d'un échantillon d'urine dans un tube de culture, et on introduit ensuite la bande dans le tube. A la suite du contact avec l'échantillon d'urine, les conjugués d'anticorps et de particules de carbone se dissolvent immédiatement et migrent en direction de la membrane à effet de mèche Un essai positif est indiqué par une coloration intense des particules de noir de carbone concentrées dans la zone indicatrice La limite de détection vaut environ 25 m UI/ml pour les deux essais sur la gonadotrophine chorionique humaine et l 'hormone lutéinisante. Exemple 8 On prépare une bande selon le protocole de l'Exem- ple 1 B, en omettant le premier élément filtre et le tam- pon réservoir La bande d'essai est ensuite introduite dans un tube à essais contenant l'anticorps marqué au sol de carbone ( 5 pl) et un échantillon d'urine conte- nant de la gonadotrophine chorionique humaine ( 100 pl), qui sont soigneusement mélangés Un signal détectable commence à apparaître au bout d'une minute environ La sensibilité de cet essai vaut environ 25 m UI/ml. Exemple 9 On lyophilise des réactifs de sol de carbone enro- bés d'anticorps monoclonaux contre la gonadotrophine chorionique humaine ou l'hormone lutéinisante ( 5 pl par tube) Les tubes peuvent être conservés dans un dessic- cateur à la température ambiante jusqu'à ce qu'on les utilise. Pour réaliser des essais sur l'hormone lutéinisante ou la gonadotrophine chorionique humaine, on disperse pl d'un échantillon d'urine dans un tube de culture contenant le sol de carbone lyophilisé ou séché Le réactif au carbone se dissout immédiatement à la suite du contact avec l'échantillon d'urine Une bande d'essai préparée comme dans l'Exemple 1 B, mais ne comportant pas le premier élément filtre et le tampon réservoir et sur laquelle on a tracé, par pulvérisation, une ligne d'anticorps ovin antigonadotrophine chorionique humaine entière ( 3 pg par bande), en guise de zone indicatrice, est ensuite insérée dans le tube Quand le mélange d'échantillons en migration atteint la zone indicatrice, une bande noire commence à apparaître si l'échantillon d'urine contient de la gonadotrophine chorionique humaine ou de l'hormone lutéinisante La sensibilité de 1 'essai dans lequel on utilise le réactif au carbone séché ou lyophilisé vaut environ 25 m UI/ml dans les deux cas Le réactif au carbone séché ou lyophilisé reste actif et présente la même sensibilité, même conservé pendant plus d'un an à la température ambiante. Exemple 10 On prépare un dispositif d'essai selon l'Exemple l B, en omettant le premier élément filtre et le tampon réservoir et en pulvérisant en ligne 1 mg/ml d'anticorps anti-thyroxine sur la membrane à effet de mèche. Après introduction dans un mélange de 5 pi de sol de carbone lié à de la thyroxine (voir Exemple 21) et 100 pl de sérum (essai par compétition), la bande témoin commence à apparaître en 2 minutes environ Pour des concentrations de thyroxine (non marquée) supérieures à environ 60 ng/ml dans l'échantillon de sérum, on ne per- çoit aucune formation de bande (une bande à peine visi- ble apparaît pour 59 ng/ml) Au contraire, pour produire une bande aussi intense que la bande témoin en l'absence de thyroxine dans l'échantillon de sérum, il faut moins de 10 ng/ml. Exemple 11 On prépare un dispositif d'essai selon l'Exemple l B, en omettant le premier élément filtre et le tampon réservoir et en pulvérisant en ligne 2 mg/ml de l'anti- gène de Lyme disponible dans le commerce (OEM Concepts) sur la membrane à effet de mèche. Quand l'extrémité formant réservoir du dispositif est plongée dans un mélange de 100 pi de sérum humain et de 5 pl de particules de carbone marquées avec un conju- gué d'isothiocyanate de fluorescéine et d'anticorps caprin antiimmunoglobuline G humaine (voir Exemple 21), un signal détectable apparaît en 4 minutes environ si l'échantillon est séropositif. Exemple 12 On prépare un dispositif d'essai conforme à l'Exem- ple 11 10 pl de sérum humain sont déposés en un point sur le second élément filtre Le dispositif est inséré dans un tube contenant 100 pl d'une suspension de parti- cules de carbone ( 5 pl) marquées avec un conjugué d'iso- thiocyanate de fluorescéine et d'anticorps caprin anti- immunoglobuline G humaine (voir Exemple 21) dans une solution d'éthylènediaminetétraacétate 20 m M Un signal détectable apparaît en 5 minutes si l'échantillon est séropositif. Exemple 13 On prépare un dispositif d'essai selon l'Exemple 11, sauf que l'on pulvérise en ligne, sur la membrane à effet de mèche, 2 mg/ml d'antigène de rubéole (Viral Antigens, Inc). Quand on met le tampon réservoir en contact avec pl de sérum humain et 5 pl de particules de carbone marquées avec un conjugué d'isothiocyanate de fluores- céine et d'anticorps caprin anti-immunoglobuline G humaine (voir Exemple 21), un signal détectable apparaît en 2 minutes environ si l'échantillon est séropositif. Exemple 14 On prépare un dispositif d'essai selon l'Exemple 13 On dépose 10 pl de sérum en un point sur le second élément filtre, et l'on introduit le dispositif dans un tube contenant 100 pl d'une suspension de particules de carbone marquées avec un conjugué d'isothiocyanate de fluorescéine et d'anticorps caprin anti-immunoglobuline G humaine (voir Exemple 21) dans une solution tampon d'éthylènediaminetétraacétate 20 m M. Un signal détectable apparaît en 3 minutes environ si l'échantillon est séropositif. Exemple 15 On prépare un dispositif d'essai selon l'Exemple 11, et on pulvérise une ligne supplémentaire d'antigène de rubéole, parallèle à la ligne d'antigène de Lyme et située à 7 mm environ de cette dernière. On dépose en un point du second élément filtre 10 pl d'un échantillon séropositif pour la rubéole On intro- duit le dispositif dans un tube contenant 100 pl d'une suspension de particules de carbone ( 10 pl) marquées avec un conjugué d'isothiocyanate de fluorescéine et d'anticorps caprin anti-immunoglobuline G humaine (voir Exemple 21) dans une solution d'éthylènediaminetétra- acétate 20 m M. Un signal détectable apparaît en 5 minutes environ le long de la ligne d'antigène de rubéole. Exemple 16 On suit le protocole de l'Exemple 15, sauf que l'on dépose en un point de la membrane 20 pl d'un échantillon séropositif pour la rubéole et la Lyme Deux signaux détectables commencent à apparaître en 5 minutes envi- ron. Exemple 17 On détermine facilement selon les techniques sui- vantes le caractère approprié de différents matériaux carbonés pour la préparation des sols de carbone, ainsi que celui des tampons pour ceux-ci. A Des mélanges de 5 mg de différents noirs de carbone (Monarch 1000, Monarch 880, Monarch 120, Regal 250 R, Regal 500 R, Vulcan XC 72 R et Vulcan XC 72, tous fournis par Cabot) et de 100 pl de polyéthylèneglycol à 2 % ( 6000 8000) sont moulus pendant 5 minutes et dilués jusqu'à 10 ml avec du tampon de solution saline phosphatée, contenant 2 mg d'un anticorps monoclonal contre la gonadotrophine chorionique humaine Après un bref traitement aux ultrasons destiné à disperser les particules de carbone dans la solution d'anticorps mono- clonal, on fait incuber les mélanges pendant 6 heures à la température ambiante et sous agitation A la fin de l'incubation, on lave les échantillons à trois reprises par centrifugation, pour éliminer tout excès d'anti- corps Chaque centrifugation est effectuée à 15 000 t/min pendant 20 minutes, à l'aide de 10 ml de solution tampon de phosphate Le culot final est mis en suspension dans ml de solution tampon à 3 % de phosphate, et soumis à un bref traitement aux ultrasons destiné à assurer une dispersion complète des particules de carbone. Pour un essai concernant la gonadotrophine chorio- nique humaine, on disperse, dans un tube de culture ( 10 x 75 mm), 20 pl de sol de carbone et 200 pl d'un échantillon d'urine, et on mélange bien le tout On laisse ensuite le mélange migrer dans une bande de papier Whatman 31 ET, mesurant 5 mm de largeur sur 100 mm de longueur, sur laquelle on a pulvérisé en ligne un anticorps ovin anti-gonadotrophine chorionique humaine, et que l'on a bloquée avec 1 % d'albumine de sérum de bovin dans une solution tampon de phosphate (p H 7,4). Il apparaît que Vulcan XC 72 donne le meilleur rap- port signal/bruit, pour 200 m UI/ml de gonadotrophine chorionique humaine On obtient des résultats semblables avec Vulcan XC 72 R, mais le signal positif est un peu plus faible. B On met 5 mg des mêmes noirs de carbone en sus- pension dans 2 ml de solution tampon de Tris-H Cl 20 m M (p H 6,8) contenant 40 m M de chlorure de sodium et 2 % (p/v) de dextrane 9400, par homogénéisation Après 2 heures d'incubation à la température ambiante, on ajoute 1 ml d'une solution à 3 % d'albumine de sérum de bovin à la suspension homogénéisée de carbone On soumet le mélange à un bref traitement aux ultrasons, et on le fait encore incuber pendant environ 12 heures à la tem- pérature ambiante A la fin de l'incubation, on place pl du mélange dans une cuvette contenant 1 ml d'eau distillée On mesure l'absorbance à 700 nm pour chaque échantillon Les résultats sont les suivants: Noir de carbone DO à 700 nm Monarch 1000 0,2333 Monarch 880 0,3129 Vulcan XC 72 R 0,6878 Vulcan XC 72 0,7428 Monarch 120 0,6225 Regal 250 R 0,3567 Regal 500 R 0,4372 C Du noir de carbone Vulcan XC 72 est mis en sus- pension dans plusieurs solutions tampons présentant dif- férents p H On homogénéise 5 mg de particules de carbone Vulcan XC 72 dans 2 ml des différentes solutions tampons, contenant 2 % de dextrane 9400, et on fait incuber le tout pendant 2 heures à la température ambiante Après l'incubation, on ajoute 5 pl de chaque produit homogé- néisé à 1 ml d'eau distillée On ajoute au mélange 1 ml de solution à 3 % d'albumine de sérum de bovin dans la même solution tampon, puis on soumet le tout à un trai- tement aux ultrasons et on le fait incuber pendant envi- ron 12 heures à la température ambiante A la fin de l'incubation, on met 5 pl du mélange en suspension dans 1 ml d'eau distillée et on mesure l'absorbance à 700 nm. Les résultats sont les suivants: DO à 700 nm Solutions Force Albumine de tampons ionique p H Dextrane sérum de bovin Phosphate de sodium 0,1 M 6, 0,3335 0,6030 Phosphate de sodium 0,1 M 6, 0,5142 0,7462 Tris-H Cl 0,02 M 6,8 0,6277 0,8452 Phosphate de sodium 0,003 M 7, 0,4722 0,5389 Phosphate de sodium 0,1 M 7, 0,4348 0,6100 Tris-H Cl 0,02 M 8, 0,6479 0,5220 Glycine-H Cl 0,1 M 8, 0,4666 0,5197 Tris-citrate 0,1 M 8, 0,4284 0,4933 Comme on peut le voir, les solutions tampons pré- sentant des p H d'environ 6,8 à 8 sont particulièrement bien adaptées pour la dispersion des particules de car- bone. Exemple 18 A un mélange de 1 mg d'anticorps anti-gonadotrophine chorionique humaine dans 1 ml de solution tampon de borate 0,3 M (p H 9,0), on ajoute sous agitation 50 ig d'isothiocyanate de fluorescéine On poursuit l'agita- tion pendant une heure, puis on fait passer le mélange sur une colonne de Sephadex G-25 pour éliminer l'iso- thiocyanate n'ayant pas réagi ainsi que d'autres subs- tances indésirables Le rapport anticorps/isothiocyanate vaut environ 1/3 A une suspension aqueuse de 1 mg de noir de carbone (Vulcan 72), on ajoute 0,5 mg du conju- gué d'anticorps On soumet le mélange à un traitement aux ultrasons, on le fait incuber pendant environ 12 heures à la température ambiante, et on le soumet à trois reprises à une centrifugation Le culot final, mis en suspension dans une solution tampon comme celle décrite dans l'Exemple 12, peut être conservé à 40 C jus- qu'à ce qu'on l'utilise. On peut obtenir des produits semblables en utili- sant un anticorps antihormone lutéinisante, ou des anticorps caprins anti-immunoglobuline G humaine et anti-immunoglobuline M. Exemple 19 A 10 ml d'une suspension aqueuse de 5 mg de noir de carbone Vulcan 72, on ajoute 200 pl d'anti-sérum caprin anti-souris On soumet le mélange à un traitement aux ultrasons, et on le fait incuber pendant environ 12 heu- res à la température ambiante On y ajoute ensuite 1 mg d'anticorps antigonadotrophine chorionique humaine, et on fait incuber ce mélange pendant 2 heures à la tempé- rature ambiante, puis on le soumet à trois reprises à une centrifugation Le culot final, mis en suspension dans une solution tampon comme celle décrite dans l'Exemple 12, peut être conservé à 40 C jusqu'à ce qu'on l'utilise. Exemple 20 A une suspension de 5 mg de noir de carbone dans ml de solution tampon de phosphate (STP), on ajoute 2 mg d'avidine Après incubation pendant 4 heures à la température ambiante, on ajoute 5 ml d'une solution à 3 % d'albumine de sérum de bovin dans STP Après 2 heures de repos, on ajoute 0,5 mg d'anticorps anti-gonadotrophine chorionique humaine, conjugué à de la biotine, dans une solution à 1 % d'albumine de sérum de bovin dans STP. Après 1 heure supplémentaire d'incubation, on soumet le mélange à une centrifugation à trois reprises Le culot final, mis en suspension dans une solution tampon comme celle décrite dans l'Exemple 12 et soumis ensuite à un bref traitement aux ultrasons, peut être conservé à 40 C jusqu'à ce qu'on l'utilise. Exemple 21 On homogénéise 10 mg de particules de carbone Vulcan XC 72 dans 2 ml de solution tampon de Tris- chlorhydrate 20 m M (p H 6,8), contenant 40 m M de chlorure de sodium et 2 % de dextrane 9400 Après 2 heures d'incubation à la température ambiante, on ajoute à la solution une solution de 5 mg d'isothiocyanate de fluorescéine dans 1 ml de solution tampon de Tris- chlorhydrate On soumet le mélange à un bref traitement aux ultrasons et on le fait incuber pendant environ 12 heures à la température ambiante Après incubation, on ajoute à la suspension de carbone 20 ml de solution tam- pon de phosphate de sodium 0,1 M (p H 7,6) et du chlorure de sodium 0,1 M, puis on soumet le tout à une centrifu- gation à 40 C et à 15 000 t/min On répète cette étape à trois reprises, et on met le culot résultant en suspen- sion dans 20 ml de solution tampon de phosphate. On ajoute 2 mg d'albumine de sérum de bovin à 2 ml de la suspension cidessus, et on fait incuber le mélange pendant 6 heures, puis on le soumet à une cen- trifugation à trois reprises On ajoute un excès de glu- taraldéhyde ( 1 %), et après incubation pendant 3 heures à la température ambiante, on le sépare par centrifuga- tion On ajoute une solution de 10 pg de thyroxine dans une quantité suffisante de diméthylformamide, et on fait incuber le mélange pendant 3 heures à la température ambiante, puis on le soumet à une centrifugation à trois reprises Le culot final, mis en suspension dans une solution tampon comme celle décrite dans l'Exemple 12 et soumis ensuite à un bref traitement aux ultrasons, peut être conservé à 40 C jusqu'à ce qu'on l'utilise. REVENDICATIONS 1 Dispositif d'essai immunochimique, caractérisé en ce qu'il comprend un support ( 20; 120; 320) et une rangée d'éléments disposés sur ce support, cette rangée d'éléments comprenant: (i) un tampon réservoir ( 10; 110; 210; 310; 510) présentant une porosité et un volume suffisants pour recevoir et contenir un échantillon liquide sur lequel on va réaliser l'essai; (ii) une membrane ( 16; 116 A, 116 B; 216; 316; 516) à effet de mèche, placée en position distale par rap- port au tampon réservoir, la membrane à effet de mèche présentant une porosité et un volume suffi- sants pour absorber une fraction importante de l'échantillon introduit dans le tampon réservoir; et (iii)au moins une zone filtre ( 12, 14; 112 A, 112 B, 114 A, 114 B; 212, 214; 312, 314; 512, 514) placée entre la membrane à effet de mèche et le tampon réservoir et en contiguïté avec ceux-ci, ladite zone filtre (a) -étant en contiguïté avec une sur- face du tampon réservoir suffisamment faible, par rapport au volume de celui-ci, pour régler le pas- sage de l'échantillon liquide depuis le tampon réservoir vers la zone filtre, et (b) permettant le passage de tout complexe spécifique ligand- récepteur présent dans ledit échantillon, depuis le tampon réservoir jusqu'à la membrane à effet de mèche, tout en empêchant le passage des composants plus gros contenus dans l'échantillon; et (iv) au moins une substance immobilisée, disposée dans au moins une zone de la membrane à effet de mèche et définissant une zone indicatrice ( 18; 118 A, 118 B; 218; 318; 518), cette substance immobili- sée pouvant fixer un complexe spécifique ligand- récepteur contenu dans l'échantillon, pour donner des signaux indiquant le résultat de l'essai. 2 Dispositif d'essai conforme à la revendication 1, caractérisé en ce que le support est en matière plas- tique ou en verre. 3 Dispositif d'essai conforme à la revendication 1, caractérisé en ce que le tampon réservoir ( 10) peut S'étendre au-delà du support. 4 Dispositif d'essai conforme à la revendication 1, caractérisé en ce qu'au moins un réactif pouvant don- ner un complexe spécifique ligand-récepteur imprègne uniformément au moins toute une portion de la zone fil- tre. Dispositif d'essai conforme à la revendication 4, caractérisé en ce que le réactif porte un marqueur. 6 Dispositif d'essai conforme à la revendication , caractérisé en ce que le marqueur est un marqueur direct. 7 Dispositif d'essai conforme à la revendication 6, caractérisé en ce que le marqueur est un sol de métal, un sol de non-métal, un sol de colorant, un indi- cateur coloré ou un latex en particules. 8 Dispositif d'essai conforme à la revendication 7, caractérisé en ce que le marqueur est un sol de car- bone. 9 Dispositif d'essai conforme à la revendication 6, caractérisé en ce que le marqueur est un marqueur indirect. Dispositif d'essai conforme à la revendication 4, caractérisé en ce que le réactif et la substance immobilisée sont des molécules se liant à un ligand. 11 Dispositif d'essai conforme à la revendication 4, caractérisé en ce qu'au moins l'un du réactif et de la substance immobilisée est un anticorps monoclonal. 12 Dispositif d'essai conforme à la revendication 4, caractérisé en ce qu'au moins l'un du réactif et de la substance immobilisée est un anticorps polyclonal. 13 Dispositif d'essai conforme à la revendication 1, caractérisé en ce que la substance immobilisée est un ligand. 14 Dispositif d'essai conforme à la revendication 13, caractérisé en ce que la substance immobilisée est un antigène ou un haptène. Dispositif d'essai conforme à la revendication 1, caractérisé en ce que la zone filtre ( 12; 112 A, 112 B; 212; 312; 512) comprend au moins un premier élément filtre placé sur le support, adjacent au tampon réservoir et contigu à celui-ci sur une surface suffi- samment petite, par rapport au volume du tampon réser- voir, pour régler le passage de l'échantillon liquide depuis le tampon réservoir vers le premier élément fil- tre; et un second élément filtre ( 14; 114 A, 114 B; 214; 314; 514), placé sur le support, adjacent au pre- mier élément filtre et en position distale par rapport au tampon réservoir, ce second élément filtre, permet- tant le passage de tout complexe spécifique ligand- récepteur présent dans l'échantillon, mais empêchant le passage des composants plus gros contenus dans l'échan- tillon. 16 Dispositif d'essai conforme à la revendication , caractérisé en ce qu'au moins un réactif produisant un complexe spécifique ligand-récepteur imprègne unifor- mément toute une portion du premier élément filtre. 17 Dispositif d'essai conforme à la revendication 16, caractérisé en ce que le tampon, le premier élément filtre, le second élément filtre et la membrane à effet de mèche comprennent chacun un matériau membranaire microporeux. 18 Dispositif d'essai conforme à la revendication 17, caractérisé en ce que chaque membrane microporeuse comprend un nylon, un matériau cellulosique, une poly- sulfone, un poly(difluorure de vinylidène), ou un poly- ester. 19 Dispositif d'essai conforme à la revendication 5, caractérisé en ce qu'un adjuvant renforçant la pro- duction ou la liaison des complexes spécifiques ligand- récepteur est présent dans le premier élément filtre. Dispositif conforme à la revendication 1, com- portant une enveloppe ( 222; 522) imperméable à l'humi- dité et entourant le dispositif, caractérisé en ce que cette enveloppe comporte une ouverture ( 224; 524) qui y est pratiquée, la surface supérieure environnante étant incurvée et s'étendant vers le bas pour former un récep- tacle en forme de cuvette, dont l'extrémité se situe au niveau du tampon réservoir ( 210; 510) et auquel une partie de ce tampon est fermement assujettie, ladite ouverture pouvant recevoir l'échantillon liquide et régler le passage de celui-ci sur le tampon réservoir, l'enveloppe comportant en outre un moyen ( 226; 526) disposé au-dessus de la zone indicatrice et permettant un examen visuel de cette dernière. 21 Marqueur immunochimique, pouvant être utilisé dans un dispositif conforme à l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce qu'il co- mprend de fines particules de noir de carbone sur les- quelles est immobilisé par adsorption un composant qui comporte, à son extrémité distale par rapport au point d'adsorption, un ligand immunologiquement actif ou une molécule se liant à un ligand. 22 Marqueur immunochimique conforme à la revendi- cation 21, caractérisé en ce que ledit composant est constitué d'haptènes, d'antigènes ou d'anticorps immuno- logiquement actifs, adsorbés sur la surface du noir de carbone. 23 Marqueur immunochimique conforme à la revendi- cation 21, caractérisé en ce que, dans ledit composant, le ligand immunologiquement actif ou les molécules se liant à un ligand sont liés de façon covalente par l'intermédiaire d'un réactif de fixation, et ce réactif de fixation est adsorbé sur la surface du noir de car- bone. 24 Marqueur immunochimique conforme à la revendi- cation 23, caractérisé en ce que le réactif de fixation est un imide, un azide, un isothiocyanate, un imidoester ou un dialdéhyde. Marqueur immunochimique conforme à la revendi- cation 24, caractérisé en ce que le réactif de fixation est le maléimide, le succinimide, le phénylazide, le glutaraldéhyde, ou un N-hydroxysuccinimidoester. 26 Marqueur immunochimique conforme à la revendi- cation 24, caractérisé en ce que le réactif de fixation est un isothiocyanate. 27 Marqueur immunochimique conforme à la revendi- cation 26, caractérisé en ce que l'isothiocyanate est le phénylisothiocyanate, l'acide 4,4 '-diisothiocyanato- stilbène-2,2 '-disulfonique, le 4-N,N-diméthylamino-azo- benzène-4 '-isothiocyanate, l'isothiocyanate de fluores- céine ou l'isothiocyanate de rhodamine. 28 Marqueur immunochimique conforme à la revendi- cation 26, caractérisé en ce que le réactif de fixation est le phénylisothiocyanate. 29 Marqueur immunochimique conforme à la revendi- cation 26, caractérisé en ce que le réactif de fixation est l'acide 4,4 '-diisothiocyanatostilbène-2,2 '-di- sulfonique. Marqueur immunochimique conforme à la revendi- cation 26, caractérisé en ce que le réactif de fixation est le 4-N,N-diméthylamino-azobenzène-4 '-isothiocyanate. 31 Marqueur immunochimique conforme à la revendi- cation 26, caractérisé en ce que l'isothiocyanate est l'isothiocyanate de fluorescéine. 32 Marqueur immunochimique conforme à la revendi- cation 26, caractérisé en ce que le réactif de fixation est l'isothiocyanate de rhodamine. 33 Marqueur immunochimique conforme à la revendi- cation 21, caractérisé en ce que les fines particules de noir de carbone et le composant immobilisé dessus par adsorption sont enrobés d'un polyéthylèneglycol présen- tant une masse moléculaire d'environ 100, de préférence d'environ 200 à environ 20 000 ou d'un dextrane présen- tant une masse moléculaire d'environ 10 000 à environ 500 000. 34 Marqueur immunochimique conforme à la revendi- cation 33, caractérisé en ce que le dextrane présente une masse moléculaire d'environ 10 000 à environ 50 000. Marqueur immunochimique conforme à la revendi- cation 33, caractérisé en ce que le polyéthylèneglycol présente une masse moléculaire d'environ 5000 à environ 12 000. 36 Marqueur immunochimique conforme à la revendi- cation 21, caractérisé en ce que dans le composant, le ligand immunochimique ou les molécules se liant au ligand sont liés à une protéine, et cette protéine est adsorbée sur la surface du noir de carbone. 37 Marqueur immunochimique conforme à la revendi- cation 36, caractérisé en ce que le ligand immunologique ou les molécules se liant au ligand sont liés de façon covalente à ladite protéine, par l'intermédiaire d'une liaison immunologique. 38 Marqueur immunochimique conforme à la revendi- cation 36, caractérisé en ce que le ligand immunologique ou les molécules se liant au ligand sont liés de façon covalente à ladite protéine par l'intermédiaire d'un réactif de fixation. 39 Marqueur immunochimique conforme à la revendi- cation 21, caractérisé en ce que dans le composant, le ligand immunologique ou les molécules se liant au ligand sont liés à une protéine, qui est elle-même liée de façon covalente à un réactif de fixation, qui est lui- même adsorbé sur la surface du noir de carbone. Marqueur immunochimique conforme à la revendi- cation 39, caractérisé en ce que le ligand immunologique ou les molécules se liant au ligand sont liés de façon covalente à ladite protéine par l'intermédiaire d'un second réactif de fixation. 41 Suspension aqueuse d'un marqueur immunochimique conforme à la revendication 21. 42 Suspension aqueuse conforme à la revendication 41, caractérisée en ce qu'elle contient au moins une substance tampon fournissant un p H auquel le ligand immunologique immobilisé est stable, et qui est situé dans l'intervalle d'environ 6 à 9. 43 Suspension aqueuse conforme à la revendication 42, caractérisée en ce qu'elle contient au moins une substance tampon fournissant un p H d'environ 6,5 à environ 8,5. 44 Procédé de préparation d'un marqueur immuno- chimique conforme à la revendication 23, caractérisé en ce qu'il comporte le fait de fixer un ligand immunologi- que ou des molécules se liant au ligand à de fines par- ticules de noir de carbone, en faisant subir à un réac- tif de fixation, simultanément ou successivement, une réaction covalente avec le ligand immunologique ou les molécules se liant au ligand et une adsorption sur les fines particules de noir de carbone. Procédé conforme à la revendication 44, carac- térisé en ce que le marqueur immunochimique est mis en contact avec une solution aqueuse d'un polyéthylène- glycol présentant une masse moléculaire d'environ 100 à environ 20 000. 46 Procédé conforme à la revendication 44, carac- térisé en ce que les fines particules de noir de carbone sont mises en contact avec une solution aqueuse d'un dextrane présentant une masse moléculaire d'environ 10 000 à environ 500 000. 47 Procédé conforme à la revendication 44, carac- térisé en ce que le ligand immunologique ou les molécu- les se liant au ligand sont liés aux fines particules de noir de carbone par l'intermédiaire d'un imide, d'un azide, d'un isothiocyanate, d'un imidoester ou d'un dialdéhyde. 48 Procédé conforme à la revendication 44, carac- térisé en ce que le ligand immunologique ou les molécu- les se liant au ligand sont fixés aux fines particules de noir de carbone par l'intermédiaire d'un isothio- cyanate. 49 Procédé conforme à la revendication 44, carac- térisé en ce que le ligand immunologique ou les molécu- les se liant au ligand sont fixés aux fines particules de noir de carbone par l'intermédiaire de phénylisothio- cyanate, d'acide 4,4 '-diisothiocyanato-stilbène-2,2 '-di- sulfonique, de 4-N,N-diméthylamino-azobenzène-4 '-iso- thiocyanate, d'isothiocyanate de fluorescéine ou d'iso- thiocyanate de rhodamine. 50 Procédé conforme à la revendication 44, carac- térisé en ce que les fines particules de noir de carbone auxquelles sont fixés le ligand immunologique ou les molécules se liant au ligand sont mises en suspension dans un milieu aqueux tamponné à un p H situé dans le domaine d'environ 6 à environ 9 et auquel le ligand immunologique immobilisé ou la molécule immobilisée se liant au ligand est stable. 51 Procédé conforme à la revendication 50, carac- térisé en ce que la suspension aqueuse est traitée avec au moins un tensioactif biologiquement acceptable, ioni- que ou non. 52 Dispositif d'essai immunochimique faisant appel à une réaction entre un ligand immunologique ou des molécules se liant au ligand et un analyte, caractérisé en ce que l'on utilise un marqueur immunochimique com- prenant des fines particules de noir de carbone sur les- quelles est immobilisé par adsorption un composant qui comporte en son extrémité, en position distale par rap- port au point d'adsorption, un ligand immunologiquement actif ou une molécule se liant au ligand, qui prend part à ladite réaction. 53 Dispositif conforme à la revendication 1, caractérisé en ce qu'il comporte une enveloppe ( 522) imperméable à l'humidité et entourant le dispositif, en ce que cette enveloppe comporte une première ouverture ( 524) qui y est pratiquée, la surface supérieure envi- ronnante étant incurvée et s'étendant vers le bas pour former un réceptacle en forme de cuvette dont l'extré- mité se situe au niveau du tampon réservoir ( 510) et auquel est fermement assujettie une partie de ce tampon, cette première ouverture pouvant recevoir un liquide et en régler le passage sur le tampon réservoir, et en ce que l'enveloppe comporte une seconde ouverture ( 530) qui y est pratiquée, directement au-dessus du second élément filtre ( 514) , cette seconde ouverture permettant de déposer directement l'échantillon sur le second élément filtre, ainsi qu'un moyen ( 526) disposé au-dessus de la zone indicatrice et permettant l'examen visuel de celle- ci.