FR 2659664 A1 19910920 FR 9003599 A 19900319 La présente invention concerne un procédé pour produire une composition d'enzymes adaptée à l'hydrolyse des polysaccharides d'un substrat lignocellulosique, la composition obtenue et son utilisation Ces enzymes seront désignés par commodité, cellulases ou composition de cellulases. Cette composition est appliquée notamment à un procédé d'hydrolyse d'un substrat lignocellulosique prétraité tel que du bois de feuillu, de la paille de céréales et des tiges de maïs. Dans la perspective d'une production de carburant de substitution à partir de biomasse lignocellulosique par la voie biotechnologique, la production d'enzymes cellulolytiques et hémicellulolytiques demeure une étape critique de tout le procédé pour des raisons aussi bien techniques qu'économiques. Concernant les nombreux microorganiques connus pour excréter des cellulases, le champignon ascomycète Trichodennrma reseei est reconnu comme l'un des plus susceptibles de donner lieu à une industrialisation de cette production d'enzymes Mandels (Annual Reports on fermentation processes vol 5, G Tsao Editeur, Academic Press NY 1981, p 35-78), a montré que les plus fortes productions d'enzymes sont obtenues en fournissant à ce champignon des celluloses purifiées comme principale source de carbone et d'énergie pour sa croissance et sa production de protéines extracellulaires, la production de cellulases étant proportionnelle à la quantité de cellulose apportée au milieu de culture. L'amélioration des souches sauvages par des techniques classiques de mutation-sélection ont conduit à l'obtention de souches de Trichoderma reesei hyperproductrices comme MCG 77 (US 4275163) MCG 80 (US 4472504) ou CL 847 (Biotechnol Lett 1983, 514-243-246) mais leurs productions de cellulases les plus importantes sont aussi reliées à la présence de cellulose purifiée comme substrat carboné principal des milieux de culture Malheureusement ces milieux de culture ne peuvent pas être extrapolés à l'échelle industrielle en raison, d'une part du coût élevé de la cellulose purifiée et, d'autre part des importantes dépenses d'énergie à consommer pour l'agitation de milieux à fortes concentrations en cellulose ( 70 à 80 g/l) et donc à fortes viscosités. C'est pourquoi on observe actuellement une tendance à l'utilisation du lactose comme principal substrat carboné pour cette fermentation En fait, le lactose est un bon inducteur de la biosynthèse des cellulases et son utilisation dans le cadre d'une production d'enzymes alimentée en fed batch donne des résultats intéressants. Cependant cette utilisation du lactose souffre de plusieurs inconvénients: le lactose n'est pas facilement disponible dans tous les pays; il n'est pas nécessairement produit sur le site de production des enzymes Par ailleurs, le lactose présente une faible solubilité dans l'eau, ce qui implique par comparaison avec d'autres sucres, la manipulation de plus grands volumes de solutions plus diluées et donc des investissements plus importants et des risques plus élevés de contamination. Il apparaît d'autre part que les cellulases produites à partir de lactose ne sont pas adaptées à l'hydrolyse de n'importe quelle biomasse lignocellulosique En fait, elle ne montrent une activité intéressante que sur des produits issus de prétraitement à la vapeur effectués en conditions acides. Ce prétraitement est une opération qui doit être généralement effectuée préalablement à toute saccharification enzymatique de biomasse lignocellulosique Il a pour objectif la destruction partielle ou totale des différentes barrières anatomiques, physiques ou chimiques, qui font obstacle à l'accessibilité et à l'activité des enzymes sur les polysaccharides cibles. Bien que différentes technologies de prétraitement aient été proposées, telles que cuissons acides, alcalines ou en présence de solvants organiques, on observe actuellement une tendance à préconiser les prétraitements de type explosion à la vapeur au cours desquels la biomasse lignocellulosique subit une cuisson en présence de vapeur d'eau à haute température ( 150 à 2500 C) pendant un temps de quelques minutes; cette cuisson est suivie d'une décompression explosive à la pression atmosphérique qui a pour effet d'arrêter les réactions chimiques qui se poursuivaient pendant la cuisson et d'entraîner par l'effet d'explosion une déstructuration intense du matériau traité L'efficacité de l'hydrolyse enzymatique du matériau prétraité dépend de la sévérité des conditions de prétraitement utilisées (température et durée), mais il existe une limite au-delà de laquelle les phénomène de dégradation chimique des sucres au cours de la cuisson deviennent trop importants pour que la valorisation du matériel prétraité soit économiquement intéressante. Par ailleurs, un des effets du prétraitement à la vapeur est de rendre soluble et d'hydrolyser la fraction hémicellulosique de la biomasse prétraitée, qui peut donc être récupérée après le prétraitement par une simple extraction à l'eau Dans le cas de prétraitements à la vapeur effectués en conditions acides, obtenues par imprégnation préalable de la biomasse par un acide généralement fort, l'extraction à l'eau permet de récupérer habituellement la totalité de la fraction hémicellulosique sous forme de monomères, principalement de xylose; le résidu de l'extraction ne contient alors plus que de la cellulose et de la lignine. Dans le cas de prétraitements à la vapeur effectués sans imprégnation acide préalable, l'extraction à l'eau ne permet de récupérer qu'une partie des hémicelluloses plus ou moins hydrolysées suivant la sévérité des conditions utilisées, l'autre partie restant associée à la cellulose et à la lignine du résidu insoluble. Ces extraits à l'eau riches en pentoses ou pentosanes peuvent faire l'objet de valorisations spécifiques intéressantes en xylitol ou en furfurol. Malheureusement les marchés de ces produits sont trop étroits pour absorber les productions de pentoses qui résulteraient d'une valorisation à grande échelle des biomasses lignocellulosiques. Enfin, la saccharification enzymatique des biomasses lignocellulosiques prétraitées, extraites à l'eau ou non, conduit à des solutions de sucres appelées hydrolysats, dont la composition dépend des conditions appliquées antérieurement à ces biomasses mais qui constituent des sources potentielles de substrats carbonés de fermentation. Les cellulases produites selon le brevet US 4472505 sont connues pour être produites à partir de cellulose pure, à partir de lactose et à partir d'hydrolysats enzymatiques de cellulose pure et sont efficaces pour hydrolyser des celluloses purifiées mais elles ne peuvent être satisfaisantes pour hydrolyser des biomasses lignocellulosiques telles que celles qui résultent des prétraitements à la vapeur effectuées sans imprégnation acide préalable. Un des objets de l'invention est donc de remédier aux inconvénients décrits ci-dessus. Plus spécialement, un objet de l'invention est de proposer une nouvelle source de carbone, très facilement disponible et bon marché et plus généralement, un nouveau procédé de fermentation pour la production d'enzymes susceptibles d'hydrolyser des biomasses lignocellulosiques prétraitées. Un autre objet est de valoriser les extraits de pentoses ou de pentosanes obtenus après prétraitement à la vapeur de substrats lignocellulosiques. Un autre objet est relatif à la production d'enzymes en quantités suffisantes et présentant les activités d'hydrolyse appropriées à la saccharification enzymatique de biomasses lignocellulosiques prétraitées. Un autre objet de l'invention concerne l'utilisation de ces enzymes pour la saccharification maximale des biomasses lignocellulosiques prétraitées On a, en effet constaté de manière inattendue que les activités de saccharification des compositions de cellulases, objets de l'invention, étaient très supérieures à ce que laissaient prévoir les mesures standardisées des activités cellulases (activités papier filtre). L'invention concerne donc une composition d'enzymes cellulolytiques capable de catalyser l'hydrolyse de biomasses lignocellulosiques diversement prétraitées. Cette composition d'enzymes cellulolytiques et hémicellulolytiques est obtenue par un procédé comprenant l'inoculation d'une souche de Trichoderma reesei, avantageusement améliorée génétiquement dans un milieu de croissance adéquat comprenant des sels inorganiques et une alimentation en sucres hydrosolubles et l'incubation de ce milieu ainsi inoculé dans des conditions permettant la croissance de ladite souche et l'excrétion de ses protéines extracellulaires De manière plus précise, l'alimentation en sucres du milieu de croissance comprend, au moins en partie, un extrait brut de pentoses hydrosolubles provenant du prétraitement d'une biomasse lignocellulosique. Le procédé de production de cellulases selon l'invention est avantageusement réalisé en fed-batch, selon la technique décrite dans le brevet US 4762788 de la demanderesse et incorporée par voie de référence. La composition de cellulases obtenue est caractérisée par les déterminations analytiques usuelles effectuées sur les échantillons de culture débarrassés de la biomasse mycélienne: les protéines solubles sont mesurées selon la méthode de Lowry et al (Lowry, O 1 H, Rosebrough, N J, Farr, A L and Randall, R J ( 1951) J Biol Chem, 193, 265-275), l'activité cellulase dite papier filtre est mesurée selon Montenecourt et al (Montenecourt, B S, Eveleigh, D E, Elmund, G K and Parcells, J ( 1978) Biotechnol. Bioeng, XX, 297-300); l'activité cellobiase est déterminée par mesure du glucose libéré en 30 mn à partir d'une solution 10 m M en cellobiose. Par extrait brut de pentoses, on entend un extrait de pentoses non purifiés susceptibles de contenir d'autres sucres comme le glucose ainsi que d'autres composés extractibles autres que les sucres (terpènes, composés phénoliques par exemple). Cet extrait brut pourrait bien évidemment être purifié pour être utilisé dans le cadre de la présente invention. Les extraits de pentoses utilisés pour l'invention peuvent être obtenus à partir de biomasse lignocellulosique par des moyens connus de l'homme de l'art Le prétaitement du substrat peut être effectué: o par cuisson acide, par exemple à 120-150 C environ pendant 2 à 6 heures, o par la technique dite de l'explosion à la vapeur comprenant une étape de cuisson en présence de vapeur d'eau à haute température pendant quelques minutes ( 1 à 10 mn) suivie d'une étape de décompression explosive à la pression atmosphérique. Cette explosion à la vapeur améliore la susceptibilité à l'hydrolyse enzymatique et solubilise au moins en partie les pentosanes. La phase de cuisson précédant la décompression explosive peut habituellement être effectuée soit après imprégnation par un acide fort entre 1500 C et 2500 C pendant une durée de 1 mn à 10 mn, de préférence 1800 C à 2000 C pendant 2 à 4 mn, soit sans imprégnation acide, généralement entre 150 et 2500 C de 1 mn à 10 mn et de préférence 205 à 2200 C pendant 3 à 6 mn. Selon un premier mode d'obtention des sucres, pour l'alimentation en sucres de la souche, les extraits bruts de pentose peuvent être extraits par resuspension dans l'eau du matériau prétraité suivi d'une filtration de cette suspension. Selon un deuxième mode, la partie restante, constituant le substrat prétraité, dépentosé en partie, peut être hydrolysée enzymatiquement On s'arrange généralement pour que les conditions de prétraitement et d'extraction soient ajustées de façon à ce que la teneur en pentoses ou pentosanes soit comprise entre 2 et 30 % de la matière sèche et de préférence supérieure à 5 %, par exemple entre 8 et 25 %. Selon un troisième mode, le substrat une fois prétraité peut être hydrolysé enzymatiquement et c'est l'hydrolysat enzymatique du substrat prétraité qui constitue une source d'alimentation en sucres pour la souche. L'hydrolyse enzymatique est réalisée par une préparation de cellulases commerciales appropriées et/ou par une composition de cellulases produites selon l'invention dans les conditions générales suivantes: le matériau à hydrolyser est mis en suspension dans l'eau à raison de 6 à 20 % de matière sèche, de préférence 8 à 12 %, le p H de cette suspension est ajusté entre les valeurs de p H 4 et p H 5,5 de préférence à p H compris entre 4,4 et 4,8, la température contrôlée a des valeurs comprises entre 40 et 600 C de préférence 45 à 50 'C; la réaction d'hydrolyse est habituellement démarrée par addition à la suspension d'une quantité de cellulases ci-dessus correspondant en général à un dosage de 5 à 20 unités papier filtre par gramme de substrat prétraité à hydrolyser, de préférence 10 unités par gramme; la réaction se poursuit généralement pendant une durée de 15 à 30 heures, de préférence 20 à 24 heures; le résidu insoluble de lignine est ensuite séparé de l'hydrolysat par filtration ou centrifugation. On opère de préférence avec les cellulases selon l'invention. Les enzymes produites selon l'invention sont généralement utilisées dans des procédés d'hydrolyse enzymatique de biomasses lignocellulosiques prétraitées, qui se déroulent habituellement de la manière décrite cidessus; dans ce cas, il n'existe en général pas de limite inférieure à la teneur en pentoses ou pentosanes du produit à hydrolyser On a constaté que cette application conduisait de manière surprenante à une quantité de sucres produits par ces enzymes, supérieure à ce que l'on pourrait attendre compte tenu de leurs activités papier filtre. On a également constaté que les cellulases selon l'invention montraient leur supériorité surprenante en présence de substrats non prétraités par voie acide On évite de ce fait une imprégnation en milieu acide, chaud et on minimise les phénomènes de corrosion. Les souches avantageusement utilisées sont par exemple les souches hyperproductrices génétiquement améliorées telles que MCG 77 décrite par Gallo dans le brevet US 4275163; MCG 80 décrite par Allen, A L et Andreotti, R E, Biotechnology and Bioengineering symposium N O 12, pages 451-459 ( 1982); RUT C 30 décrite par Montenecourt, B S et Eveleigh, D.E, Applied Environmental Microbiology, volume 34, page 777 ( 1977) et CL 847 décrite par Warzywoda, M, et al Biotechnology letter, volume 5, page 243 (avril 1983). On a obtenu d'excellents résultats avec Trichoderma reesei CL 847 et RUT C 30. Les matières premières utilisées peuvent être choisies parmi les pailles de céréales, les tiges et rafles de maïs, les plaquettes ou déchets de bois de feuillu ou tout autre source de matériau lignocellulosique présentant généralement au moins 10 % en poids de pentoses ou pentosanes potentiels, par exemple de 15 à 35 % en poids. L'invention sera mieux comprise au vu des exemples non limitatifs ci- dessous. EXEMPLE 1 (comparatif) On prépare une solution aqueuse de sels minéraux dénommée C 1, de composition suivante: 3,32 g/l de potasse (KOH), 4 ml/A d'acide phosphorique à 85 %, 5,6 g/l de sulfate d'ammonium (NH 4) 2504, 1,2 g/l de sulfate de magnésium (Mg SO 4, 7 H 20), 1,2 g/l de chlorure de calcium (Ca C 12), 6,4 mg/l de sulfate de manganèse (Mn SO 4), 5,6 mg/l de sulfate de zinc (Zn SO 4, 7 H 20), 8 mg/l de chlorure de cobalt (Co C 12), 20 mg/1 de sulfate de fer (Fe SO 4, 7 H 20). On prépare une solution aqueuse stérile dénommée C 2 comportant pour 1 litre, 250 g de lactose Un fermenteur contenant 1 litre de solution CI, 0, 8 litre d'eau, 2 g/l d'extrait de levure, 2 ml d'antimousse, 2 ml de Tween 80 et 7,5 g de lactose (environ 4,16 g/l) est stérilisé par autoclave pendant 20 minutes à 120 C. Après refoidissement, la température du milieu est ajustée à 27 C, le p H du milieu à la valeur de p H 5 Le fermenteur est alors ensemencé par 0, 2 litre d'une préculture liquide de la souche de Trichoderma reesei RUT C 30 La température est régulée à 27 C pendant les 24 premières heures de la culture puis à 25 C jusqu'à la fmin de la culture Le p H est régulé à la valeur de p H 5 pendant toute la durée de la culture par addition d'une solution d'ammoniaque; la concentration en oxygène dissous dans la culture est maintenue au-dessus de 15 % en poids de la concentration saturante par ajustements de la vitesse d'agitation et du taux d'aération. Des dosages de lactose sont effectués au cours du temps sur des échantillons de culture Après 10 heures, la concentration en lactose dans le moût de fermentation est de 0,8 g/i La culture est alors alimentée stérilement de façon continue par la solution C 2; la vitesse d'alimentation est modulée de façon à ce que la concentration en sucres ne dépasse pas 2 g/l pendant toute la durée de la culture La vitesse moyenne d'alimentation en lactose est de 1,9 gramme par heure jusqu'à la centième heure, et de 2,25 grammes par heure jusqu'à la fin de la culture Après 145 heures, 1 litre de la solution C 2 a été injectée dans la culture, l'alimentation est alors interrompue et le moût de fermentation est récolté. Le moût de fermentation est clarifié par centrifugation Le clarifiat, dénommé El, constitue la préparation enzymatique Les déterminations analytiques sur cette préparation El donnent les résultats présentés dans le tableau I. Le potentiel de saccharification de la préparation enzymatique obtenue a été évalué de la façon suivante: deux substrats lignocellulosiques dénommés PA et PN ont été préparés à partir de paille de blé Pour le substrat PA, la paille est trempée pendant 16 heures dans une solutions 0, 08 N en acide sulfurique puis égouttée; le produit humide subit ensuite une cuisson de 3 minutes sous 18 bar de pression de vapeur d'eau; cette cuisson est arrêtée soudainement par décompression explosive à l'atmosphère; le produit obtenu est lavé à l'eau jusqu'à neutralité du p H des eaux de lavage, récupéré par filtration et conservé à basse température La teneur en hémicelluloses résiduelles du produit PA est inférieure à 3 % de sa matière sèche totale Le produit PN est préparé suivant un protocole analogue, à l'exception de la phase de trempage acide qui est omise La teneur en hémicelluloses résiduelles du produit PN est de 23 % de la matière sèche totale. Les essais de saccharification sont effectués en incubant à 500 C dans un incubateur agité, des fioles d'erlenmeyer de 250 ml, remplies par 100 g de masse réactionnelle de composition suivante: 10 g (exprimés en matière sèche) de substrat PA ou PN à hydrolyser, 50 ml de tampon 100 m M acétate de sodium p H 4,8, 200 mg de protéines de la préparation enzymatique étudiée et une quantité d'eau suffisante pour compléter à 100 g Après 24 heures, l'incubation est arrêtée en plaçant une partie aliquote des hydrolysats dans un bain-marie bouillant pendant 5 minutes; les échantillons sont ensuite clarifiés par centrifugation, filtrés sur une membrane 0,2 g et leur contenu en sucre est analysé par chromatographie liquide haute pression. La préparation enzymatique El a permis d'obtenir les résultats de saccharification suivants: (Tableau Ibis). Substrat PA Substrat PN (g/l) (g/l) Cellobiose 9,2 2,7 Glucose 26,6 17,9 Xylose 0,9 12,9 Arabinose 0,3 1,1 Total g/l 37 34,6 TABLEAU Ibis EXEMPLE 2 Dans cet exemple, le lactose utilisé dans l'exemple 1 pour la préparation de la solution C 2 est remplacé poids pour poids par du xylose commercial pur. Le fermenteur est ensemencé par 200 ml d'une préculture de la souche RUT C 30 de Trichoderma reesei La culture est conduite dans les mêmes conditions que pour l'exemple 1 Après 145 h de culture, la préparation enzymatique E 2 est obtenue Les déterminations analytiques, effectuées sur cette préparation E 2, sont présentées dans le tableau I. L'évaluation du potentiel de saccharification de la préparation E 2 donne les résultats suivants (tableau II). Substrat P Substrat PN (g/l) (g/l) Cellobiose 7,9 5,6 Glucose 15,5 22,4 Xylose 0,5 15,3 Arabinose 0,1 0,9 Total g/l 24 44,2 TABLEAU II EXEMPLE 3 On prépare un extrait brut de pentoses dénommé Pl de la façon suivante: 43 kg de paille de blé sont trempés dans une solution 0,08 N d'acide sulfurique puis égouttés et pressés Le produit humide obtenu est introduit dans un autoclave équipé d'une vanne de sortie à ouverture instantanée. Dans cet autoclave, le produit subit une cuisson de 3 minutes sous 18 bar de pression de vapeur d'eau à l'issue de laquelle, par détente explosive à l'atmosphère, il est expulsé de l'autoclave dans un cyclone Le produit solide récupéré au bas du cyclone est extrait deux fois par 180 litres d'eau Les eaux d'extraction récupérées par filtration sont concentrées par évaporation sous vide jusqu'à obtenir la composition suivante: 315 g/l de xylose, 41 g/L d'arabinose, 50 g/l de glucose. On prépare une solution aqueuse stérile dénommée C 3 comportant 0,616 litre d'extrait Pl et 0,384 litre d'eau Dans cet exemple, la préparation C 2 à base de lactose de l'exemple 1 est remplacée par la solution C 3; les autres conditions sont égales par ailleurs Le fermenteur est ensemencé par 200 ml d'une préculture de la souche RUT C 30 de Trichoderma reesel La culture est conduite dans les mêmes conditions que pour l'exemple 1 Après 145 heures de culture, la préparation enzymatique E 3 est obtenue Les déterminations analytiques effectuées sur cette préparation E 3 sont présentées dans le tableau I. L'évaluation du potentiel de saccharification de la préparation E 3 donne les résultats suivants (tableau III). Substrat PA Substrat PN (g/l) (g/l) Cellobiose 12,06 11,7 Glucose 11,03 11,3 Xylose 0,97 16,3 Arabinose 0,26 1,7 Total g/l 24,34 41 TABLEAU III EXEMPLE 4 Un hydrolysat pauvre en pentoses, dénommé HI est préparé de la façon suivante: le résidu solide de la paille traitée et extraite pour obtenir l'extrait Pl de l'exemple 3, est repris dans 250 kg d'eau Le p H de la suspension est ajusté à p H 4,8 par addition de potasse 700 g de protéines d'une préparation enzymatique produite selon l'exemple 7 sont ajoutés et l'hydrolyse s'effectue à 50 'C pendant 20 heures La suspension obtenue est séparée par filtration en une phase liquide et un résidu solide La phase liquide est concentrée par évaporation sous vide jusqu'à obtenir la composition suivante: 44,4 g/l de xylose, 296,1 g/l de glucose, 14,3 g/l de cellobiose et 3,2 g/l d'arabinose. On prépare une solution aqueuse stérile dénommée C 4 comportant 0,698 1 d'hydrolysat HI et 302 ml d'eau. Dans cet exemple, la préparation C 2 à base de lactose de l'exemple i est remplacée par la solution C 4; les autres conditions sont égales par ailleurs. Le fermenteur est ensemencé par 200 ml d'une préculture de la souche RUT C 30 de Trichoderma reesei La culture est conduite dans les mêmes conditions que pour l'exemple i Après 145 heures de culture, la préparation enzymatique E 4 est obtenue Les déterminations analytiques effectuées sur cette préparation E 4 donnent les résultats présentés dans le tableau I. L'évaluation du potentiel de saccharification de la préparation E 4 est présentée dans le tableau IV. Ssta PA Substrat PA Substat PN (S/t) (g/1) Cellobiose 7,1 4,4 Glucose 24,9 15,9 Xylose 0,9 16, 5 Arabinose 0,24 1,2 Total g/l 33,1 38 TABLEAU IV EXEMPLE 5 Un hydrolysat riche en pentoses, dénommé H 2 est préparé de la façon suivante: de la paille de blé est prétraitée en conditions acides par explosion à la vapeur suivant un protocole analogue à celui de la préparation du substrat PA de l'exemple 1 70 kg du produit récupéré après l'explosion sont repris par 180 kg d'eau; le p H de la suspension est ajusté à p H 4,8 par addition de potasse; 700 g de protéines d'une préparation enzymatique produite selon l'exemple 7 sont ajoutés et l'hydrolyse s'effectue à 50 C pendant 20 heures La suspension obtenue est séparée par filtration en une phase liquide et un résidu solide La phase liquide est concentrée par évaporation sous vide jusqu'à obtenir la composition suivante: 118 g/l de xylose, 42,5 g/l de cellobiose, 197,2 g/L de glucose et 14,3 g/l d'arabinose. On prépare une solution aqueuse stérile, dénommée C 5 comportant 0,6721 d'hydrolysat H 2 et 0,3281 d'eau. Dans cet exemple, la solution C 2 à base de lactose de l'exemple 1 est remplacée par la solution C 5, les autres conditions sont égales par ailleurs. Le fermenteur est ensemencé par 200 ml d'une préculture de la souche RUT C 30 de Trichoderma reesei La culture est conduite dans les mêmes conditions que pour l'exemple 1 Après 145 heures de culture, la préparation enzymatique E 5 est obtenue Les déterminations analytiques sur cette préparation E 5 sont données dans le tableau I. L'évaluation du potentiel de présentée dans le tableau V. saccharification de la préparation E 5 est Substrat PA Substrat PN (g/l) (g/l) Cellobiose 10,2 2, 11 Glucose 16,9 22,7 Xylose 0,4 15,23 Arabinose 0,1 1,18 Total g/l 27,7 41,22 TABLEAU V EXEMPLE 6 La souche CL 847 de Trichoderma reesei est cultivée dans des conditions identiques à celles de l'exemple 1 Après 145 heures de culture, la préparation enzymatique E 6 est obtenue Les déterminations analytiques effectuées sur cette préparation E 6 sont données dans le tableau I. L'évaluation du potentiel de saccharification de la préparation E 6 est présentée dans le tableau VI. Substrat PA Substrat PN (g/i) (g/l) Cellobiose 8,81 1,4 Glucose 30,39 22, 4 Xylose 1 14,9 Arabinose 0,36 1,4 Total g/l 40,56 40 TABLEAU VI EXEMPLE 7 La souche CL 847 de Trichoderma reesei est cultivée dans des conditions identiques à celles de l'exemple 2 Après 145 heures de culture sur xylose, la préparation enzymatique E 7 est obtenue Les déterminations analytiques effectuées sur cette préparation E 7 sont données dans le tableau I L'évaluation du potentiel de saccharification de la présentée dans le tableau VII. préparation E 7 est Substrat PA Substrat PN (g/l) (g/l) Cellobiose 12,5 5 Glucose 25,7 23,4 Xylose 0,7 15,1 Arabinose 0,3 1,1 Total g/l 39,4 44 TABLEAUVII EXEMPLE 8 La souche CL 847 de Trichoderma reesei est cultivée dans des conditions identiques à celles de l'exemple 3 Après 145 heures de culture sur extrait de pentoses, la préparation enzymatique E 8 est obtenue Les déterminations analytiques effectuées sur cette préparation E 8 sont présentées dans le tableau I. L'évaluation du potentiel de saccharification de cette préparation E 8, est donnée dans le tableau VIII. Substrat PA Substrat PN (g/l) (g/l) Cellobiose 12,46 8,4 Glucose 23,71 20,5 Xylose 1,1 18,3 Arabinose 0,3 1,2 Total g/l 37,57 48,4 TABLEAUVIII Potentiel Exemple Caracteristiques analytiques d'hydrolyse du substrat (g/l) i Substrat Proteines FPU 3 glucosidase No Souche par par par par PA PN de fermentation g/l ml mg ml mg 1 Rut C 30 Lactose 18,4 12,8 ( 0,69) 8, 7 ( 0,45) 37 34,6 2 " Xylose 3,7 0,55 ( 0,15) 0,08 ( 0,02) 24 44,2 3 " Extrait pentose 16,2 3,4 ( 0,21) 0,2 ( 0,012) 24,3 41 4 " Hydrolysat dépentosé 28 17,8 ( 0,63) 13,5 ( 0,48) 33,1 38 " Hydrolysat riche C 5 28 13,5 ( 0,48) 3,9 ( 0,14) 27,7 41,2 6 CL 847 Lactose 31,2 22 ( 0,70) 24 ( 0,77) 40,6 40 7 " Xylose 4,8 1,4 ( 0,3) 0,12 ( 0,025) 39,4 44 8 " Extrait pentose 26 10,6 ( 0,41) 3,8 ( 0,146) 37,6 48,4 co Ko (n w REVENDICATIONS 1 Composition d'enzymes cellulolytiques et hémicellulolytiques produite par un procédé o l'on met en présence dans des conditions de fermentation appropriées au moins une souche de Trichoderma reesei avec un milieu de croissance carboné comprenant des sels inorganiques et une alimentation en sucres hydrosolubles, caractérisée en ce que ladite alimentation en sucres comprend au moins en partie un extrait brut de pentoses hydrosolubles provenant d'un substrat lignocellulosique prétraité. 2 Composition selon la revendication 1 dans laquelle la souche de Trichoderma reesei est hyper productrice. 3 Composition selon la revendication 1 ou 2, dans laquelle l'extrait brut de pentoses est contenu dans un hydrolysat enzymatique du substrat prétraité. 4 Composition selon la revendication 1 ou 2, dans lequel l'extrait brut de pentoses est contenu dans un hydrolysat enzymatique du substrat prétraité et en partie dépentosé. Procédé pour la production d'enzymes capables de catalyser l'hydrolyse d'un substrat lignocellulosique prétraité comprenant l'inoculation d'une souche de Trichodenna reesei dans un milieu de croissance carboné adéquat, comprenant des sels inorganiques et une alimentation en sucres hydrosolubles, l'incubation de ce milieu ainsi inoculé dans des conditions permettant la croissance de la souche, le procédé étant caractérisé en ce que le milieu de croissance comprend une alimentation en au moins un extrait brut de pentoses provenant d'un prétraitement d'un substrat lignocellulosique. 6 Procédé selon la revendication 5 dans lequel l'alimentation en sucres provient d'un traitement comprenant une étape de prétraitement du substrat lignocellulosique et une hydrolyse enzymatique du substrat prétraité. 7 Procédé selon la revendication 5 dans lequel l'alimentation en sucres provient d'un traitement comprenant une étape de prétraitement du substrat lignocellulosique, une étape de lavage partiel du substrat prétraité et une étape d'hydrolyse enzymatique du substrat prétraité dépentosé partiellement par le dit lavage partiel. 8 Procédé selon la revendication 5 dans lequel l'alimentation en sucres provient d'un traitement comprenant une étape de prétraitement du substrat lignocellulosique suivi d'une étape d'extraction à l'eau pour récupérer l'extrait de pentoses. 9 Procédé selon l'une des revendications 5 à 8 dans lequel le prétraitement du substrat est réalisé par une cuisson acide, à 120 à 150 'C pendant 2 à 6 heures ou par une technique dite de l'explosion à la vapeur comprenant une étape de cuisson du substrat entre 150 et 250 'C pendant 1 à 10 mn suivie d'une décompression explosive à la pression atmosphérique. 10 Procédé selon la revendication 9 dans lequel l'étape de cuisson est réalisée en milieu acide fort. 11 Procédé selon la revendication 6 ou 7 dans lequel l'hydrolyse enzymatique du substrat prétraité et l'hydrolyse enzymatique du substrat dépentosé en partie sont effectuées en présence d'une quantité de cellulases commerciales et/ou de la composition de cellulases selon l'une des revendictions 1 à 4, de 5 à 20 unités papier filtre par gramme de substrat prétraité contenant 6 à 20 % de matières sèches durant 15 à 30 heures, à 40-60 'C, et à p H compris entre 4 et 5,5. 12 Utilisation d'une composition selon l'une des revendications 1 à 4 ou d'une composition obtenue selon l'une des revendications 5 à 11 dans un procédé d'hydrolyse enzymatique des polysaccharides d'un substrat lignocellulosique prétraité. 13 Utilisation selon la revendication 12 dans laquelle la quantité de la composition correspond à un dosage de 5 à 20 unités papier filtre par gramme de substrat, la température est de 40 à 60 'C et la durée de l'hydrolyse est de 15 à 30 heures.