FR 2638326 A1 19900504 FR 8814349 A 19881103 La présente invention porte sur un procédé de lutte biologique contre la varroatose, parasitose grave de l'abeille qui est due à Varroa Jacobsoni Oud., acarien ecto- parasite spécifique du genre Apis. Ce procédé de lutte biologique comporte deux aspects: d'abord celui du diagnostic de cette parasitose, et, dans le cas o il est présent, le piégeage et la destruction de l'acarien. La présente invention porte également sur des dispositifs de piégeage pour la mise en oeuvre de ce procédé. La varroatose est apparue en France en 1982, après s'être propagée en Asie et en Europe de l'Ouest. Elle fait également des ravages en Afrique et en Amérique du Sud, et elle est présente depuis quelques mois aux USA. Varroa Jacobsoni trouve, dans les colonies de l'abeille domestique Apis mellifica, les conditions climatiques et trophiques optimales dont il a besoin pour se développer. En prélevant l'hémolymphe des ouvrières et des males - chez les adultes comme chez les larves et les nymphes -, il provoque des troubles importants chez ces insectes, qui entraînent généralement leur mort précoce. La colonie d'abeilles est donc très affaiblie, et elle disparaît au bout de 4 ans environ. De plus, les colonies parasitées sont rapidement contaminées par des infections secondaires, en particulier des viroses, qui accélèrent encore leur extinction. A titre d'exemple, une enquête réalisée par le Syndicat des Producteurs de Miel de France & la fin de l'année 1986 a révélé que, dans la région méditerranéenne, toutes les colonies étaient parasitées, et qu'une grande partie d'entre elles était dans une situation critique. La disparition, ou même l'affaiblissement, des colonies a d'importantes conséquences négatives, aussi bien au plan agronomique qu'au plan écologique: La disparition des colonies d'abeilles entraîne une diminution de la pollinisation de nombreuses plantes cultivées, l'abeille étant le principal insecte pollinlsateur. Les effets négatifs sur certaines productions végétales sont importants en grandes cultures, en production de semences hybrides, en arboriculture et en cultures de petits fruits. Egalement, la disparition des colonies d'abeilles entraîne une moins grande rentabilité des exploitations apicoles, par suite des pertes de colonies, de la diminution des récoltes de miel, et des surcoûts de production dus aux traitements chimiques. Du point de vue écologique, les abeilles participent d'une façon générale à l'équilibre écologique en pollinisant de nombreuses plantes sauvages, et leur disparition risque de contrarier cet équilibre. Les seuls traitements actuellement efficaces contre Varroa Jacobsoni sont les traitements chimiques à base de molécules acaricides. Cependant, l'utilisation de ces produits présente différents inconvénients: d'une part, les acariens deviennent plus ou moins rapidement résistants à ces molécules, et, d'autre part, ils risquent de ternir l'image des produits sains et naturels de la ruche et en particulier du miel. Bien qu'aucune trace de résidu n'ait jamais été détectée en France, il n'est pas possible de préjuger de l'avenir sur ce suJet. De plus, le mode d'utilisation de ces molécules peut présenter certains inconvénients: si leur durée d'action est courte (de quelques heures & quelques Jours), les nombreux varroas, qui se trouvent à l'intérieur des cellules operculées, ne sont pas atteints par les molécules et émergeront quelques Jours plus tard pour se reproduire à leur tour et prolonger l'infestation; de telles méthodes ont donc une efficacité limitée. A l'inverse, si leur durée d'action est longue (quelques semaines>, les molécules peuvent passer dans la cire ou le miel au bout d'un certain temps et les contaminer. De plus, l'utilisation d'acaricides pendant de longues périodes n'est pas sans présenter de risques de toxicité pour les abeilles elles-mêmes. On observe que, pour se reproduire, la femelle de Varroa Jacobsoni quitte l'abeille adulte et pénètre dans une cellule contenant une larve d'ouvrière ou de male, avec une préférence pour les larves de males, environ deux Jours avant l'operculation. Les Déposants ontalors pu démontrer l'existence de kairomones émises par les larves d'Apis mellîfîca ligustica qui ont un effet attractif sur Varroa Jacobsoni dans les conditions de température de la colonie. Les principes actifs de ces kairomones sont à la base du procédé de lutte biologique qui fait l'objet de la présente invention et dont la mise au point est devenue urgente compte tenu du fait que, comme indiqué cidessus, cet acarien représente actuellement, au niveau international, le plus grave danger qui menace les colonies de l'abeille Apis mell1 fica. La présente invention porte donc d'abord sur un procédé pour la lutte biologique contre Varroa Jacobsoni, caractérisé par le fait qu'on introduit, dans le milieu o 20. peut être présent ledit acarien, un produit attractif constitué par: - un extrait hexanique total de larves d'abeilles, notamment des larves de males et des larves d'ouvrières, en particulier, des larves de mâles (faux- bourdons), ces larves étant notamment des larves d'abeilles Apis mellifica ligustica; - une fraction active comme l'huile d'arachide, l'huile de tournesol. Conformément à un mode de réalisation préféré de ce procédé, on introduit le produit attractif dans le milieu o l'acarien Varroa Jacobsoni peut être présent, & une température comprise entre 30 et 36'C. On peut également associer au produit attractif au moins un adJuvant destiné & en augmenter la volatilité, cet adJuvant étant choisi notamment parmi des esters organiques plus volatils que ceux indiqués ci-dessus et ne présentant pas l'activité attractive selon l'invention. L'association avec un tel adJuvant permettra d'appliquer ce procédé de lutte biologique aux températures inf-rieures à '*, qui peuvent régner, suivant les saisons, dans la ruche, en particulier dans la partie inférieure de la ruche, qui est la plus commode d'accès pour disposer le piège selon l'invention, tel qu'il sera décrit ci-après. On peut également moduler la vitesse de volalitisation du produit attractif, en solubilisant celui- ci dans une substance organique, telle qu'une paraffine, une cire végétale, la cire d'abeille; en le plaçant sous la forme d'une suspension colloïdale dans l'eau, immobilisée ou non par un agent gélifiant; ou encore en l'incluant dans un support solide, comme la terre d'infusoires. Egalement, on peut prévoir d'associer au produit attractif au moins une hormone, telle qu'une hormone Juvénile, ainsi qu'au moins un diluant solide inerte, comme la terre d'infusoires, l'alumine, la cellulose ou une cellulose modifiée, le polyoxyéthylène, les matières végétales sèches, les polymères comme le polyethylène ou le polychlorure de vinyle. Il est également envisageable d'appliquer le produit attractif par pulvérisation ou vaporisation (aérosol). Dans le cas o l'on vise à piéger l'acarien, on peut, ou bien associer au produit attractif un moyen pour piéger l'acarien par agglutination; ou bien un pesticide ou un acaricide de contact notamment peu ou pas volatil, ce qui détruira l'acarien, ou encore un agent stérilisant, ce qui l'empêchera de proliférer. Dans un mode de réalisation préféré, on applique le produit attractif dans la ruche, à l'entrée de la ruche ou à l'extérieur de la ruche, au sein d'un piège, en empêchant, si besoin est, au moyen d'une grille protectrice, les abeilles de pénétrer dans ledit piège. En fonction de la température de la colonie (qui varie en particulier avec la saison et la présence de couvain), et en fonction de l'emplacement dans lequel on place le piège (dans, à l'entrée de ou en dehors de la ruche), on associe avantageusement à ce procédé un traitement thermique, de façon à en augmenter l'efficacité. On a en effet constaté que le palmitate de méthyle notamment est très actif à 34'C, mais qu'il ne l'est plus à 22'C; or, il se trouve que 34'C est la température moyenne du couvain d'abeilles. Pour cette molécule en particulier, il est donc intéressant de noter que la température adéquate de son efficacité est légèrement supérieure à son point de fusion (28-30'C>. Ainsi, le procédé de lutte biologique selon l'invention présente deux aspects complémentaires: - d'une part, il peut être utilisé comme procédé de diagnostic de la parasitose (méthode d'avertissement): l'apiculteur sera ainsi informé de la présence du parasite et de l'importance de l'infestation et donc éventuellement procéder à une application contrôlée d'un traitement acaricide; - d'autre part, il pourra être utilisé comme procédé de lutte proprement dite, les acariens étant éliminés au moyen de pièges (les molécules actives étant utilisées en leurres chimiques), en étant simplement piégés, par exemple par une substance adhésive, ou tués, par exemple, par un acaricide de contact. Ainsi, la présente invention concerne également un dispositif pour la mise en oeuvre du procédé tel qu'il vient d'être défini, ce dispositif étant caractérise par le fait qu'il consiste en un piège capable d'attirer l'acarien Varroa Jacobsoni par la présence du produit attractif tel que défini ci-dessus, éventuellement associé à au moins un adjuvant destiné à en augmenter la volatilité, et/ou à en moduler la vitesse de volatilisation, et/ou à au moins un diluant inerte, et/ou à au moins une hormone. Dans un mode de réalisation particulier, le piège comprend un support portant un revêtement adhésif dans lequel est incorporée une quantité de produit attractif, et, le cas échéant, d'un pesticide, d'un acaricide et/ou d'un agent stérilisant, ou encore un support poreux imprégné d'une quantité de produit attractif et, le cas échéant, de pesticide, d'acaricide, et/ou d'agent stérilisant. En particulier, on peut utiliser un support allongé que l'on disposera à plat sur le sol de la ruche, au centre de celle-ci. Dans un autre mode de réalisation particulier, le piège est constitué par un boîtier ouvert renfermant le produit attractif, le cas échéant associé à au moins un adjuvant tel que défini ci-dessus, et/ou à au moins un pesticide, un acaricide et/ou un agent stérilisant, l'ouverture dudit boîtier pouvant être fermée par une grille empêchant les abeilles de pénétrer dans ledit boîtier. Ainsi, dans le cas d'une adjonction d'un acaricide de contact (par exemple, en cas de très forte infestation), il ne serait plus à craindre que cet acaricide pollue la colonie, puisque, d'une part, les abeilles n'auraient pas de contact avec ce produit (présence de la grille protectrice); et, d'autre part, l'acaricide ne serait pas diffusé dans la ruche sous la forme d'aérosol comme il l'est dans certaines méthodes actuellement autorisées, et n'atteindrait donc pas les rayons o est stockée la récolte. Les dispositifs selon l'invention peuvent également être associés à un moyen de chauffage, comme une résistance chauffante, de façon à accroître l'efficacité du procédé. Ainsi, le principal avantage du procédé selon l'invention est d'utiliser des molécules qui sont généralement présentes naturellement dans la colonie d'abeilles, et qui ne risquent donc pas de polluer les différents produits de la ruche: miel, pollen, gelée royale, propolis, cire. C'est un procédé qui est d'un emploi aisé, et convient aussi bien aux apiculteurs professionnels qu'aux amateurs. On décrira maintenant l'isolement et l'identifi- cation des substances actives de l'invention, puis le comportement d'attraction de Varroa jacobsoni par des composés extraits de larves d'abeilles. I - Isolement et identification des substances actives a) Extraction: Les larves mâles d'abeilles Apis mellifIca ligustica ont été prélevées deux Jours avant l'operculation de leurs cellules. Trois cents larves ont été extraites dans 50 ml d'hexane, pendant une heure, à la température ambiante (6 équivalents larves (Eql) par ml). b) Chromatographie sur colonne: 8 ml d'extrait hexanique , ont été. évaporés et chromatographiés sur une colonne de silice SDS (70-230 mesh) longueur 20 cm, diamètre 0,5 cm. La colonne de silice a été lavée abondamment avec l'acétate d'éthyle et restabilisée par l'hexane. L'extrait a été élué successivement avec 4 ml d'hexane (fraction F1), 4 ml de dichlorométhane (F2), et 4 ml d'acétate d'éthyle (F3). La fraction active F2 (voir paragraphe II) a été évaporée sous un courant d'azote, et reprise dans 2,7 ml d'hexane. Cette solution hexanique est analysée en CPG. c) Chromatographie en phase gazeuse: L'analyse en CPG a été effectuée sur un chromatographe Carlo Erba 6000 équipé d'un inJecteur on column, d'un détecteur FID et d'un intégrateur. Deux types de colonne capillaires ont été utilisées pour l'analyse de cette fraction active: - OV1 greffée (longueur: 50 m, diamètre: 0,32 mm, programme: 50-200'C/10'C/mn) à 300'C/5'C/mn)), gaz vecteur: hydrogène à 4 x 10 Pa - Carbowax CW20M (longueur: 50 m; diamètre: 0,32 mm. programme: 40-260'C/3'C/mn), gaz vecteur: hydrogène 4 x 104 Pa. Sur la colonne apolaire OV1, on observe 6 pics avec des épaulement pour certains pics. Sur la colonne polaire CW 20M, on obtient une bonne résolution, et on observe au total 10 pics. d) Couplage CG/SM: L'unité de couplage CG/SM est composée d'un chromatographe Varian 3400 équipé d'un inJecteur Split Splitless et d'une colonne CW 20M (longueur: 50 m, diamètre: 0,32mm), gaz vecteur hélium et d'un spectromètre de masse Finigan Mat Incos 50. Le chromatogramme résultant est représenté sur la figure 1. e> Identification: Tous les 10 pics (a & J) qui composent la fraction active F2 ont été identifiés et quantifiés: a) palmitate de méthyle....... ....... 0,26 gg/Eql 20. b) palmitate d'éthyle.................. 0,09 gg/Eql d) stéarate de méthyle................. 0,08 pig/Eql f) stéarate d'éthyle................... 0,04 pg/Eql c) oléate de méthyle................DTD: ... 0,07 pg/Eql e) oléate d'éthyle..................... 0,03 pg/Eql )25 linoléate de méthyle................ 0,05 gg/Eql h) linoléate d'éthyle......DTD: ............ 0,01 jg/Eql i) linolénate de méthyle............... 0,59 pg/Eql J) li1nolénate d'éthyle................. 0,18 gg/Eql Leurs spectres de masse et leurs temps de rétention, en CPG sur deux colonnes de polarité différente sont ldentiques avec ceux de référence obtenus..DTD: commercialement chez Sigma. II Etude du comportement d'attraction de Varroa Jlacobsoni en présence de différentes substances issues de l'insecte hôte Cette étude a été réalisée dans un olfactomètre dynamique à quatre choix, qui permet le contrôle rigoureux des flux dans les quatre champs odorisés ou non (Vet et al, Physiol. Entomol. 8, pages 97-106 (1983); Kaiser et al, J. Insect. Behav. (1988) (sous presse). Dans le protocole choisi, sur les quatre champs de l'olfactomètre, un ou deux selon les cas sont odorisés, les autres étant inodores. Le dispositif était placé dans une enceinte thermostatée à 32 + 1'C (humidité relative: 90 5%), qui est la température correspondant & la préférence thermique de l'acarien (Le Conte et Arnold, Apidologie. 16(2). pages 155-164 (1988). La répartition de Varroa Jacobsoni dans les différents champs a été analysée selon deux méthodes complémentaires: i) une représentation sous la forme de niveaux de gris d'intensité croissante, établie grace à un programme informatisé et correspondant à la présence cumulée de Varroa Jacobsoni pendant toute la durée de l'expérience (Backchine et al, 1988, en préparation). ii> le nombre moyen de varroas présents dans les champs odorisés et dans les champs témoins a été calculé en fonction du temps passé dans chaque champ. La figure 2 du dessin annexé représente la distribution spatiale des femelles de Varroa Jacobsoni dans 1' olfactomèt re. A: Témoin: les quatre champs sont inodores. B: palmitate de méthyle: deux des quatre champs (supérieur gauche et inférieur droit) sont odorisés avec du palmitate de méthyle; les deux autres champs sont inodores. La figure 3 illustre les réponses olfactives des femelles de Varroa Jacobsoni au palmitate de méthyle et à d'autres composés d'extraits de larves mâles d'abeilles. 1 1 Chacun des champs d'un olfactomètre dynamique & quatre choix était traversé par un flux d'air, à la vitesse de 0,9 0, I 1/h. Selon les cas, un ou deux des champs étaient odorisés, les autres étant inodores. Les larves d'abeilles, ou les différents extraits et composés dont l'efficacité biologique était à tester, étaient disposés dans une fiole en verre connectée à un bras de l'olfactomètre. Les extraits étaient déposés sur un papier filtre Whatman (GF/F) de 2 x 2 cm; les autres fioles recevant un papier filtre témoin des mêmes dimensions. Les extraits chimiques étaient renouvelés toutes les deux expérimentations; auparavant, l'olfactomètre était nettoyé à l'alcool et rincé à l'eau distillée. Le dispositif subissait une rotation de 90' après 7 tests consécutifs, afin d'éliminer l'interférence d'autres signaux dans l'orientation des acariens. Les varroas utilisés étaient des femelles prélevées dans une colonie d'abeilles et maintenues à 22'C pendant 7 à 9 Jours sur des ouvrières dans une cagette d'élevage. 56 varroas répartis en deux séries ont été utilisés pour chaque test. Les acariens ont été testés individuellement pendant 6 minutes 15 secondes. Leur position était relevée toutes les 5 secondes. En l'absence de stimulation odorante, les varroas se distribuent au hasard dans l'olfactomètre (figure 2). Le temps passé dans chacun des quatre champs ne diffère pas significativement des autres (test de Friedman, X2 32,76; DDL = 57) (figure 3). En présence de 15 larves males vivantes d'ApIs melllfica ligustica (âgées de 5-6 Jours), les acarlens ont présenté un comportement d'attraction très significatif (X = 7,02; p larves par les femelles de Varroa Jacobsoni. Un extrait hexanique de larves d'abeilles mêles de même âge que les précédentes, (représentant 1,2 Eql) s'est révélé également très attractif (X2 = 7,6; p a été testée au moyen du test biologique décrit ci-dessus; seule la fraction F2 s'est avérée attractive (x2 = 7,28; p L'efficacité biologique des molécules identifiées à partir des dix composés présents dans cette fraction a été testée à raison de 1.g de chaque constituant par champ odorisé. Le palmitate de méthyle (PM), le palmitate d'éthyle (PE) et le linolénate de méthyle (LM) ont provoqué séparément un comportement d'attraction de Varroa jacobsonl identique à celui de l'extrait total (Figure 3), alors que les autres composés sont sans effet. Dans un autre essai, le mélange de deux molécules: PM et SM (1/1) a été testé en compétition avec le PM seul aucune différence significative n'apparaît entre les deux champs odorisés (x2 = 0,04). Le SM n'a8 donc aucun effet synergique sur l'attractivité entraînée par le PM utilisé seul. De plus, l'attractivité du PM est étroitement dépendante de la température ambiante. Si à a18 température de 32 + 1'C l'attraction du PM est hautement significative (figure 3), utilisée à la température de 22'C, aucune différence significative dans la répartition des varroas entre les champs odorisés par le PM et les champs témoins (X = 0,42) n'a pu être mise en évidence (figure 3). La chaleur et les facteurs chimiques ont donc un effet synergique sur la manifestation du comportement d'attraction de Varroa jacobsoni. Le rôle crucial Joué par la température dans les relations abeille-varroa a déjà été démontré (Le Conte et Arnold, 1986, 3rd Meeting of the E.C. Varroa Experts'group, Bad Homburg RFA; Le Conte et Arnold, 1987, Apidologle 18(4>, pages 305 à 320). REVENDICATIONS 1 - Procédé pour la lutte biologique contre Varroa Jacobsoni, acarien ectoparasite spécifique du genre Apis, caractérisé par le fait qu'on introduit, dans le milieu o peut être présent ledit acarien, un produit attractif constitué par un extrait hexanique total de larves d'abeilles. 2 - Procédé pour la lutte biologique contre Varroa Jacobsoni, acarien ectoparasite spécifique du genre Apis, caractérisé par le fait qu'on introduit, dans le milieu o peut être présent ledit acarien, un produit attractif constitué par une fraction active d'un extrait hexanique total de larves d'abeilles. 3 - Procédé selon l'une des revendications 1 et 2, caractérisé par le fait qu'on utilise un extrait hexanique total issu de larves de mâles ou de larves d'ouvrières, ou la fraction active dudit extrait. 4 - Procédé selon l'une des revendications 2 et 3, caractérisé par le fait qu'on utilise une fraction active qui résulte d'un fractionnement sur une colonne de silice. - Procédé pour la lutte biologique contre Varroa Jacobsoni, acarien ectoparasite spécifique du genre Apis, caractérisé par le fait qu'on introduit, dans le milieu o peut être présent ledit acarien, un produit attractif constitué par au moins un ester actif dérivant d'un alcool aliphatique en C 1-C6 et d'un acide carboxylique en C 1O-C24, à chaine droite ou ramifiée, saturé ou comprenant une ou plusieurs doubles liaisons cis ou trans, conjuguées ou non, un cycle benzénique ou un hétérocycle pouvant être inclus dans la chaîne dudit acide. 6 - Procédé pour la lutte biologique contre Varroa Jacobsoni, acarien ectoparasite spécifique du genre Apis, caractérisé par le fait qu'on introduit, dans le milieu o peut être présent ledit acarien, un produit attractif constitué par un mélange de: - palmitate de méthyle; - palmitate d'éthyle - stéarate de méthyle; - stéarate d'éthyle; - oléate de méthyle; - oléate d'éthyle; - linoléate de méthyle; - linoléate d'éthyle; linolénate de méthyle; et - linolénate d'éthyle, ou encore un mélange actif d'au moins deux de ces esters. 7 - Procédé pour la lutte biologique contre Varroa Jacobsonf, acarien ectoparasite spécifique du genre Apis, caractérisé par le fait qu'on introduit, dans le milieu o peut être présent ledit acarien, un produit attractif constitué par du palmitate de méthyle, du palmitate d'éthyle, du linolénate de méthyle ou un mélange de deux de ces esters ou un mélange des trois, ou encore un mélange comportant au moins l'un de ces esters avec au moins un autre ester ne présentant pas en lui-même l'activité attractive. 8 - Procédé pour la lutte biologique contre Varroa Jacobsoni, acarien ectoparasite spécifique du genre Apis, caractérisé par le fait qu'on introduit, dans le milieu o peut être présent ledit acarien, un produit attractif constitué par un mélange d'esters obtenus par transestérification à partir d'une huile comme l'huile d'arachide, l'huile de tournesol. 9 - Procédé selon l'une des revendications 1 & 8, caractérisé par le fait qu'on introduit le produit attractif, dans le milieu o l'acarien Varroa Jacobsoni peut être présent, à une température comprise entre 30 et 36'C. 10 - Procédé selon l'une des revendications 1 & 9, caractérisé par le fait qu'on associe au produit attractif au moins un adJuvant destiné à en augmenter la volatilité, comme un ester organique plus volatil que ceux définis à l'une des revendications 5 & 7. 11 - Procédé selon l'une des revendications 1 à 10, caractérisé par le fait qu'on module la vitesse de volalitisation du produit attractif, en solubilisant celui- ci dans une substance organique, telle qu'une paraffine, une cire végétale, la cire d'abeille; en le plaçant sous la forme d'une suspension colloïdale dans l'eau, immobilisée ou non par un agent gélifiant; ou encore en l'incluant dans un support solide, comme la terre d'infusoires. 12 - Procédé selon l'une des revendications 1 à , caractérisé par le fait qu'on associe au produit attractif au moins un diluant solide inerte, comme la terre d'infusoires, l'alumine, la cellulose ou une cellulose modifiée, le polyoxyéthylène, les matières végétales sèches, les polymères comme le polyéthylene ou le polychlorure de vinyle. 13 - Procédé selon l'une des revendications 1 à 12, caractérisé par le fait qu'on associe au produit attractif au moins une hormone, telle qu'une hormone Juvénile. 14 - Procédé selon l'une des revendications 1 à 9, caractérisé par le fait qu'on applique le produit attractif par pulvérisation ou vaporisation. - Procédé selon l'une des revendications 1 à 13, visant' à piéger l'acarien Varroa Jacobsoni, caractérisé par le fait qu'on associe au produit attractif un moyen pour piéger l'acarien par agglutination. 16 - Procédé selon l'une des revendications 1 b , visant à piéger et à détruire l'acarien Varroa Jacobsoni, ou à l'empocher de proliférer, caractérisé par le fait qu'on associe au produit attractif un pesticide ou un acaricide de contact, notamment peu ou pas volatil, ou encore un agent stérilisant. 17 - Procédé selon l'une des revendications 1 à 16, caractérisé par le fait qu'on applique le produit attractif dans la ruche, à l'entrée de la ruche ou à l'extérieur de la ruche, au sein d'un piège, en empêchant, si besoin est, au moyen d'une grille protectrice, les abeilles de pénétrer dans ledit piège. 18 - Dispositif pour la mise en oeuvre du.procédé tel que défini à l'une des revendications 1 à 13 et 15 à 17, caractérisé par le fait qu'il consiste en un piège capable d'attirer l'acarien Varroa Jacobsoni par la présence d'un produit attractif tel que défini à l'une des revendications 1 à 8, éventuellement associé à au moins un adjuvant destiné à en augmenter la volatilité, et/ou à en moduler la vitesse de volatilisation, et/ou à au moins un diluant inerte et/ou à au moins une hormone. 19 - Dispositif selon la revendication 18, caractérisé par le fait que le piège comprend un support portant un revêtement adhésif dans lequel est incorporée une quantité de produit attractif, et, le cas échéant, d'un pesticide, d'un acaricide et/ou d'un agent stérilisant, ou encore un support poreux imprégné d'une quantité de produit attractif et, le cas échéant, d'un pesticide, d'un acaricide, et/ou d'un agent stérilisant. - Dispositif selon la revendication 18, caractérisé par le fait que le piège est constitué par un boîtier ouvert renfermant le produit attractif, le cas échéant associé à au moins un adJuvant tel que défini à la revendication 18, et à au moins un pesticide, un acaricide et/ou un agent stérilisant, l'ouverture dudit boîtier pouvant être fermée par une grille empêchant les abeilles de pénétrer dans ledit bottier. 21 - Dispositif selon l'une des revendications 18 à 20, caractérisé par le fait qu'il est associé à un moyen de chauffage.