FR 2625511 A1 19890707 FR 8718495 A 19871231 Procédé d'obtention in vitro de tissus reconstitués. La présente invention a pour objet des tissus recons- titués en trois dimensions, un procédé d'obtention desdits tissus et leur utilisation à des fins d'études cliniques ou d'essais pharmacologiques. Le choix des moLécules, pouvant servir de principe actif pour un médicament en vue du traitement de cellules différenciées anormales au sein d'un tissu pathologique, est facilité si l'on dispose de cellules en quantité suffisante pour permettre une expérimentation in vitro. Il est possible de mettre en culture des fragments d'explants d'un tissu. Une première méthode de primo-culture (ci-après méthode classique) consiste à mettre les fragments à adhérer sur le fond plat d'un flacon de culture, immergés dans un milieu de culture, puis à les incuber jusqu'à ce qu'une sortie de cellules soit constatée. Une autre méthode de primoculture d'explants de tissus récemment décrite (C. LUGASSY, O. ENJOLRAS et o J.P. ESCANDE, C.R. Acad. Sc. Paris, T.301, Série III, n 17, p. 779- 784, 1985) - la méthode de culture sous lattice compacte couvrante - qui se caractérise par le fait que l'on recouvre les explants d'une lattice de derme-équivalent obtenue en rétractant du collagène par des fibroblastes, s'est révélée d'une grande efficacité. Au-delà de la primo- culture, quelle que soit la technique mise en oeuvre, après un certain nombre de passages, on obtient en monocouche une population cellulaire homogène. Néanmoins, il est clair que chaque population ainsi obtenue a une organisation sans rapport avec celle d'un tissu o les cellules différenciées d'un type donné sont au contact avec les cellules du stroma et, en tout état de cause, parmi celles-ci des fibroblastes. Il est d'abord apparu que seul un modèle à trois dimensions, associant cellules différenciées, anormales ou non, du type soumis à expérimentation et fibroblastes, pourrait permettre de tester, dans des conditions expérimentales simulant le contexte rencontré. in vivo, les molécuLes intéressantes pour le traitement d'un tissu lésé. Il a déjà été montré (C. LUGASSY et J.P. ESCANDE, O.R. Acad. Sci. Paris, t.305, Série III, p. 507-513, 1987) qu'il était possible, par la reconstruction in vitro de mélanomes malins à partir des cellules recueillies lors de la culture sous lattice couvrante d'explants de mélanomes malins, d'obtenir de tels modèles à trois dimensions. Ces modèles de l'art antérieur se caractérisent par le fait que les cellules différenciées y sont associées à des fibro- blastes provenant de deux origines différentes et issus précisément les uns du stroma de l'expiant du tissu primo-cultivé et les autres de la lattice elle-même. La demanderesse a maintenant montré qu'il était possible de manière surprenante de préparer un modèle associant des cellules différenciées d'un type donné, issues d'un expiant de tissu, et des fibroblastes d'un seul type. L'invention concerne, selon un premier aspect, un tissu reconstitué en trois dimensions, constitué de cellules diffé- renciées d'un type donné issues d'un expiant d'un tissu, de fibro- blastes d'un seul type et de collagène. Les cellules différenciées peuvent appartenir à tout type connu. Il s'agit, d'une manière préférée, de types cellulaires rencontrés dans le derme et plus particulièrement de mélanocytes. Ces cellules peuvent être dans un état pathologique, bénin ou malin; elles peuvent également être normales. Il est en effet essentiel à ce propos de considérer que L'étude clinique de cellules affectées par une pathologie et la recherche d'un traitement approprié sont facilitées par une étude comparée de ces cellules et des cellules normales dont elles sont initialement issues. L'invention concerne notamment des tissus reconstitués en trois dimensions dont Les cellules différenciées sont des mélanocytes issus d'un mélanome. Les cellules d'aspect fibroblastique peuvent provenir de diverses origines. Les fibroblastes d'origine vasculaire sont particulièrement bien adaptés. De préférence, on utilise des fibroblastes préparés à partir d'une tumeur vasculaire et, notamment, d'un angiome. Selon l'invention, il est possible de construire à partir de cellules différenciées d'un type donné de très nombreux tissus reconstitués, chacun associant ces cellules à un type de fibro- blastes particulier. L'ensemble de ces tissus reconstitués peut alors permettre, et c'est un avantage majeur de l'invention, une analyse comparée des inter-relations cellulaires dont sont capables les cellules différenciées au regard des fibroblastes; cette analyse est notamment utile pour appréhender la croissance des tumeurs. Les tissus reconstitués, selon l'invention, constituent des entités biologiques que l'on maintient en vie au contact d'un milieu de culture adapté à la culture et à l'entretien des cellules eucaryotes. Un milieu tel que le milieu RPMI 1640 (G.E. MOORE et aL, J. Am. Med. Assoc. 199, 8(1967) 87-92), éventuellement complété, par exemple par un ou plusieurs acides aminés, du sérum de veau foetal et un ou plusieurs antibiotiques, convient. L'invention concerne, selon un autre aspect, un procédé d'obtention des tissus reconstitués selon l'invention. Ce procédé se caractérise en ce que l'on prépare séparément, d'une part une population homogène de cellules différenciées d'un type donné et d'autre part une population de fibroblastes, et que l'on met à incuber, en présence de colagène, ces deux populations. Il convient de noter la simplicité de mise en oeuvre du procédé selon l'invention qui est remarquable, lorsque la population homogène des cellules dont on veut étudier la pathologie, peut être obtenue à partir d'une lignée de ces cellules. D'une manière générale, partant d'un tissu non encore exploré, les celLules différenciées sont préparées à partir d'un expiant de tissu. Des fragments de cet expiant sont soumis à une primo-culture selon l'une des méthodes connues. Les cellules différenciées sortant de ces fragments sont recueillies, après un traitement à la trypsine tel que seules les cellules différenciées se détachent, et mises en culture. On procède alors à des repiquages successifs, généralement limités à 15 pour des cellules 2625 511 non cancéreuses ou en nombre théoriquement illimité pour des cellules cancéreuses, de manière à disposer in fine d'une suspension cellulaire dense. Les fibroblastes sont préparés à partir de la culture d'un expIant d'un tissu d'intérêt. L'expLant, découpé en petits fragments, est mis en culture selon la méthode de primo-culture classique. Les fibroblastes contenus dans l'expIant envahissent le flacon en 3 à 6 semaines; on peut alors procéder à des repiquages successifs, en évitant généralement de dépasser 15 passages, de façon à disposer in fine d'une suspension cellulaire dense. En ce qui concerne les cellules différenciées, il est possible, lorsqu'il s'agit de cellules cancéreuses, de partir d'une lignée préétablie. Cette lignée est mise en culture et repiquée de manière à disposer in fine d'une suspension cellulaire dense. Qu'il s'agisse des cellules différenciées ou des fibro- blastes, il est bien entendu possible de conserver la suspension cellulaire finale ou toute suspension cellulaire intermédiaire sous forme congelée. Un milieu de culture convenant pour la préparation des populations de cellules différenciées et de fibroblastes est également le milieu RPMI, éventuellement complété, notamment par un ou plusieurs acides aminés, du sérum de veau foetal et un ou plusieurs antibiotiques. On met en présence, sous forme de suspension, les cellules différenciées et les fibroblastes. Leur mélange peut contenir par unité de volume 3/4 de cellules différenciées et 1/4 de fibroblastes ou inversement 1/4 de cellules différenciées et 3/4 de fibroblastes. Toutes les combinaisons intermédiaires sont possibles. Il convient seulement d'éviter que l'une des deux populations cellulaires n'ait un effectif inférieur au tiers de celui de l'autre population cellulaire. D'une manière préférée, on met en présence autant de cellules différenciées que de fibroblastes.- Le nombre de cellules à introduire dépend, d'une part, du volume final dans lequel le mélange cellulaire va être mis à incuber après addition de collagène et, d'autre part, de la quantité de collagène introduite. Ce volume final est lui-même 26255 1 1 fonction de la taille du récipient à fond plat mis en oeuvre. A titre d'exemple, lorsque l'on utilise une boîte de Petri de 6 cm de diamètre, il est avantageux, en présence de 1,5 ml d'une solution de collagène à 1 mg/ml, pour un volume final de 4,7 ml, d'introduire globalement 2.106 cellules sous un volume de 0,5 ml sous la forme d'un mélange préformé des. deux catégories de cellules, contenant 4.106 cellules par ml ou.par addition de 0,25 ml d'une suspension d'une catégorie de cellules et de 0, 25 ml d'une suspension de l'autre catégorie de cellules, chaque suspension contenant 4.106 cellules par ml. Le collagène utilisé est obtenu à partir de tissus conjonctifs; les tendons de la queue du rat sont une source facile d'emploi. On prépare une solution de collagène légèrement acide, le collagène étant après extraction et purification mis en solution, par exemple, dans une solution'à 1 pour 1000 (v/v) d'acide acétique. La solution de collagène mise en oeuvre peut conteoir de 0,1 à 5 mg de colagène par'ml. D'une manière préférée, elle contient 1 mg par ml. A la solution de collagène placée dans un récipient à fond plat tel qu'une boîte de Petri, sont ajoutés, de préférence simultanément, les deux suspensions cellulaires ou leur mélange préalablement préparé, un milieu nutritif ainsi qu'un agent neutralisant tel que de la soude. Le mélange obtenu est mis à incuber à une température adaptée à la culture de cellules de mammifères, et de préférence à 37 C. Apres plusieurs jours, on constate l'apparition, sous l'action des cellules qui rétractent le colLagène, d'un disque irrégulier dont les dimensions'se stabilisent. Ce disque constitue un tissu reconstitué à 3 dimensions selon l'invention. Les dimensions de ce tissu reconstitué sont fonction de la quantité de colLagène et du nombre de cellules mises en jeu capables de rétracter le collagène. A titre d'exemple, lorsque l'on utilise 2.106 cellules sous un volume de 0,5 ml pour 1,5 ml d'une solution de collagéne à 1 mg/ml dans une boîte de Petri de 6 cm de diamètre, et en présence de 2 ml de milieu RPMI 1640 complété de 0,25 ml de NaOH et de 0,45 ml de sérum de veau foetal, on obtient, 2625 5 1 1 après 4 à 8 jours d'incubation à 37 C, un tissu reconstitué dont la forme évoque celle d'un disque aux contours irréguliers de 5 à cm de diamètre et de 0,5 à 2 mm d'épaisseur. Le tissu reconstitué ainsi obtenu se caractérise notamment par son aptitude à produire, une fois transféré dans un flacon de culture et mis à adhérer sur le fond du flacon, d'une manière continue, des cellules qui s'échappent de sa périphérie dans l'ensemble de la boîte. On distingue des cellules d'aspect fibroblastique constituant un tapis et des cellules différenciées s'organisant en colonies à la surface de ce tapis; elles sont issues -Les unes et les autres des cellules initiales mises en oeuvre. Lorsque les cellules différenciées sont cancéreuses, le tissu reconstitué constitue une entité biologique d'une grande stabilité en ce sens qu'il conserve son organisation tissulaire et sa cohésion et produit en primo-culture des cellules des deux catégories initiales. Ce phénomène d'émergence cellulaire ne cesse que lorsque lesdites cellules sorties du tissu reconstitué viennent à confluence cellulaire et tapissent d'une manière complète le fond du récipient. Il est possible, néanmoins, de relancer ce phénomène d'émergence cellulaire en transférant le tissu reconstitué dans un autre récipient neuf. De manière surprenante, il est possible d'obtenir, à partir d'un tissu reconstitué, obtenu à partir de cellules diffé- renciées émergeant de fragments d'un expIant de tissu mis en primoculture ou appartenant à une lignée cellulaire - dit tissu reconstitué de première génération -, un deuxième tissu reconstitué présentant des caractéristiques très voisines. De même, à partir de ce tissu reconstitué - dit de deuxième génération - il est possible d'obtenir un tissu reconstitué présentant des caractéristiques très voisines. D'une manière générale, il est en définitive possible, à partir d'un tissu reconstitué de génération d'ordre n, d'obtenir un tissu reconstitué dérivé de génération d'ordre n+1 présentant des caractéristiques peu différentes de celles du tissu reconstitué de génération d'ordre n. 262551 1 Il suffit, en effet, de recueilLir les cellules sorties du tissu reconstitué initial et de les mettre au contact d'une solution de colagène. Le tissu reconstitué dérivé est obtenu après une incubation de quelques jours. Un tissu reconstitué d'ordre n+1 peut, comme il a été indiqué pour les tissus reconstitués de première génération, être transféré dans un milieu neuf. Il a été constaté, néanmoins, que, si un tissu recons- titué d'ordre n+1 a des caractéristiques voisines de celles du tissu reconstitué d'ordre n dont il est issu, plus n est élevé, plus le tissu d'ordre n+1 diffère du tissu reconstitué initialement obtenu d'ordre 1, en ce sens que, de génération en génération, les tissus reconstitués s'appauvrissent en cellules d'aspect fibroblastique et qu'en émerge en proportion un nombre toujours plus élevé de cellules différenciées, devenant incapables, en raison du nombre réduit de cellules d'aspect fibroblastique, de reconstituer - en prenant appui sur des cellules d'aspect fibroblastique ayant adhéré sur le fond du récipient - des colonies. Les mêmes observations sont faites d'un transfert à l'autre d'un tissu reconstitué donné. Cette évolution des tissus reconstitués selon l'invention, de génération en génération ou de transfert en transfert, n'est cependant pas un réel handicap pour l'utilisation desdits tissus reconstitués. Il est, en effet, toujours possible d'obtenir un tissu reconstitué de première génération à partir des cellules différenciées émergeant d'un tissu reconstitué quelconque selon l'invention. Il suffit de recueillir les cellules et de les mélanger selon le procédé de l'invention décrit ci-dessus, en présence de collagène à une suspension des fibroblastes préparés à partir de La population initialement mise en oeuvre pour l'obtention en primo-culture du tissu reconstitué d'ordre 1. L'invention concerne selon un autre aspect, l'utilisation desdits tissus reconstitués en tant qu'agents d'études cliniques et outils de pharmacologie, lorsque se posent notamment le problème de l'identification d'une pathologie affectant des cellules différenciées et celui du choix des molécules pouvant servir de 26 2 5 5 11 principe actif pour un médicament adapté au traitement de cette pathologie. En effet, selon l'invention, il est possible, à partir soit des cellules différenciées impliquées dans une pathologie, soit des mêmes cellules normales, de construire en laboratoire un grand nombre de tissus reconstitués, en associant à ces cellules soit les fibroblastes du stroma les accompagnant in situ, soit des fibroblastes d'une autre origine. Ces tissus reconstitués constituent alors des modèles expérimentaux en trois dimensions permettant de déterminer différents paramètres biologiques dont l'analyse autorise, en fonction des observations antérieures, à orienter l'étude clinique. Ils permettent également, en recréant un contexte proche du contexte in vivo, de choisir les molécules les plus aptes à un traitement visant spécifiquement les cellules différenciées malades. EXEMPLE Cet exemple décrit l'obtention de trois tissus recons- titués à partir d'une lignée cellulaire de mélanocytes issus d'un mélanome malin et de fibroblastes de trois origines différentes, ainsi que l'obtention, à partir de ces trois mélanomes malins reconstitués (MMcoR1), de trois mélanomes malins de deuxième génération (MMcoR2) puis de trQis mélanomes malins de troisième génération (MMcoR3). Parallèlement, un essai témoin est réalisé dans des conditions identiques, mais sans ajouter de fibroblastes. Une comparaison des caractéristiques des mélanomes malins recons- titués obtenus est présentée. I - REACTIF ET MATERIEL a) CoLLagène Du collagène de type I a été extrait de queues de rats et préparé selon la technique connue (dont on trouvera une description dans Proc. Naty. Acad. Sci. USA, Vol. 76, o n 8, 1979, p. 1274), sous la forme d'une solution purifiée aqueuse à 1 pour 1000 (v/v) d'acide acétique contenant 1 mg de collagène par ml. b) Milieu de culture complet Milieu RPMI 1640 (Gibco) additionné de: * 1 % de L-glutamine * 15 % (v/v) en final de sérum de veau foetaL * pénicilline à raison de 100 unités par ml * streptomycine à raison de 100 pg par ml c) FLacons de culture Des flacons dont une face plate présente une surface de 25 cm2, commercialisés par la Société Falcon, ont été utilisés. 2 -MODE OPERATOIRE A) Obtention des mélanomes malins reconstitués de première génération a) Préparation d'une suspension de mélanocytes: Des fragments d'un expiant d'une métastase cutanée thoracique d'un mélanome malin humain du cou sont placés au contact d'une face plane d'un flacon (F1) de culture dans lequel 2 ml de milieu de culture complet ont été versés. Le flacon est porté à 37 C. Il est constaté à partir des fragments une émergence de cellules. Parmi ces cellules, dès la première semaine, on observe quelques cellules mélanocytaires au milieu de cellules d'aspect fusiforme. Après 5 à 8 jours, la quantité de milieu est portée à ml. Le milieu est ensuite renouvelé tous les 5 jours. Au terme de la quatrième semaine de l'incubation, les cellules-d'aspect fusiforme recouvrent ladite face plane du flacon d'un tapis continu à la surface duquel apparaissent de nombreux !lots de mélanocytes. Le milieu de culture est alors éliminé par renversement du flacon, et de la solution de rinçage de HANKS (Proc. Soc. Exp. Biol. Med., 1949, 71, 196) est ajoutée puis, après un court temps de contact, éliminée. 26255 1 1 L'addition de 0,5 ml d'une solution de trypsine à 0,25 % (p/v) dans le flacon permet alors, après un contact interrompu au bout de 3 minutes par l'addition de 5 ml de milieu complet, le détachement des seuls mélanocytes, dont l'adhérence est moins importante que celle des cellules fusiformes. A l'aide d'une pipette, la suspension cellulaire est recueillie et centrifugée à 230 g pendant 5 min. Le culot - qui est pigmenté - est repris dans 10 ml de milieu complet. La suspension obtenue est répartie dans 2 flacons (F2) à raison de 5 ml par flacon. Les flacons sont mis à incuber 8 jours à 37 C en présence de 5 % de C02. Les cellules de ce premier passage sont trypsinisées, recueillies, et repiquées comme indiqué ci-dessus dans 2 flacons (F3). Apres 8 jours d'incubation à 37 C en présence de 5 % de C02, les cellules issues de ce deuxième passage sont trypsinisées. Les 4 suspensions cellulaires préparées à partir des 4 flacons (F3) sont regroupées et centrifugées à 230 g pendant 5 minutes. Le culot de ce dernier passage, qui est faiblement pigmenté, est mis en suspension et porté en incubation pour un troisième passage. A l'issue de ce dernier passage, les cellules sont recueillies après traitement par la trypsine, puis centrifugées. Le culot, qui est achromique, est remis en suspension dans un milieu complet en vue d'un comptage cellulaire dont il est tenu compte de manière à obtenir une suspension M1 contenant 4.106 cellules par ml. b) Préparation des suspensions de fibroblastes i) Origine des cellules Trois biopsies ont été pratiquées respectivement à partir * de La peau normale d'un sujet caucasien âgé de 24 ans. (ci-après fibroblastes a) * de la peau normale d'un sujet noir âgé de 28 ans. (ci-après fibroblastes b) * d'un angiome capillaire veineux de la face chez une femme de 20 ans. (ci-après fibroblastes c) ii) Mode opératoire Chacun des 3 explant% obtenus lors des biopsies est traité de la manière décrite au paragraphe ci-dessus. La confluence cellulaire est obtenue pour les primo-cultures en 3 à 5 semaines et pour les premier et second passages en 7 à 14 jours. Il est à noter qu'il est nécessaire de laisser agir la trypsine au moins minutes pour obtenir le détachement des fibroblastes en raison de leur forte adhérence. En définitive, chaque type de fibroblastes est obtenu sous la forme d'une suspension F1 contenant 4.106 cellules par ml. c) Coincubation des mé.lanocytes et des fibroblastes en présence de collagène On met en présence dans une boite de Petri de 6 cm de diamètre contenant du milieu de culture les suspensions M1 et F1 en ajoutant du collagène, les différents composants et ingrédients étant apportés dans les proportions suivantes: - solution de collagène........ 1,5 ml - milieu de culture complet.... 2 ml - NaOH 0,1M................... 0,250 ml sérum de veau foetal......... 0,450 ml - suspension M1........... 0, 25 ml - suspension F1................ 0,25 ml On met donc en incubation 2. 106 cellules en présence de 1,5 ml d'une solution de collagène à 1 mg/ml. Après 2 à 10 jours de rétraction à 37 C, il se forme une lattice qui est la reconstitution d'un mélanome malin dit de première génération (mélanome MMcoR1). B) Obtention des mélanomes malins co-reconstitués de deuxième génération et troisième génération Apres 8 à 15 jours d'incubation à 37 C, le méLanome MMcoR1 est transféré et mis à adhérer dans un flacon contenant du milieu de culture complet que l'on place en incubation à 37 C. Le mélanome MMcoR1 donne naissance par migration hors de sa masse vers l'ensemble du fond du flacon à une population cellulaire P2, constituée également de cellules mélanocytaires différenciées et de cellules d'aspect fibroblastique. A partir de cette population P2, on prépare une suspension S2. 0,5 ml d'une solution de trypsine à 0,25 % (p/v) est ajouté. Apres 5 à 15 minutes de contact, on constate le détachement et l'individuali- sation de l'ensemble des cellules. La suspension est recueillie par pipetage et ajustée de manière à contenir 4.106 cellules par ml. Un mélanome malin de deuxième génération (MMcoR2) est alors reconstitué en ajoutant, à 0,50 ml de la suspension S2, 1,5 ml de solution de collagène en présence de 2 ml de milieu de culture complet additionné de 0,25 ml de NaOH 0,1 M et de 0,45 ml de sérum de veau foetal. D'une manière identique, à partir de la suspension S3 préparée à partir de la population P3, également constituée de cellules mélanocytaires différenciées et de cellules d'aspect fibroblastique, à laquelle donne issue le mélanome MMcoR2, un mélanome malin de troisième génération (MMcoR3) est reconstitué. C) Transfert des mélanomes malins reconstitués Chaque mélanome malin reconstitué est mis en culture jusqu'à ce que les cellules, auxquelles il donne naissance dans le flacon, parviennent à confluence du fait de leur prolifération. Le mélanome est alors transféré et remis dans un flacon neuf contenant du milieu de culture complet. L'opération est renouvelée toutes les 4 à 8 semaines en fonction de la rapidité de la croissance cellulaire. D) Reconstitution de mélanomes matins de première génération à partir des trois.élanomes malins de troisième génération 0,5 ml d'une solution de trypsine à 0,25 % (p/v) est versé dans le flacon contenant le mélanome MMcoR3 obtenu en B. Apres un contact de 5 minutes, la suspension cellulaire qui contient essentiellement des méLanocytes est prélevée, puis ajustée à 4.10 cellules par ml. 0,25 ml de cette suspension est alors mélangé à 0,25 ml de la suspension F1 initialement utilisée pour l'obtention du méLanome de première génération selon le protocole décrit en 2c. Trois nouveaux mélanomes malins ont ainsi été obtenus. Chacun présente les caractéristiques du MMcoR1 initial dont il est dérivé. 3 - RESULTATS 9 mélanomes reconstitués ont été obtenus: 3 de première génération (MMcoR1), 3 de deuxième génération (MMcoR2) et 3 de troisième génération (MMcoR3). Le tableau ci-après présente leur origine et leur filiation: Cluemie25 seouPremière deuxième troisième CeLLules mises en oeuvre génération génération génération mélanocytes+fibroblastes aÀ MMcoRla MMcoR2a MMcoR3a méLanocytes+fibroblastes b MMcoRlb MMcoR2b MMcoR3b mélanocytes+ fibroblastes c MMcoRlc MMcoR2c MMcoR3c Parallèlement, un essai témoin réalisé avec les seuls mélanocytes sans fibroblastes a conduit à l'obtention de trois générations successives de lattices de mélanocytes peu rétractées (LM) notées ci-après respectivement LM1, LM2 et LM3 et ne constituant pas des tissus reconstitués au sens de l'invention. Pour chaque mélanome reconstitué et chaque lattice LM, on a noté son pouvoir de rétraction en mesurant son diamètre, sa capacité à adhérer sur le fond du récipient le contenant et la couleur du culot centrifugé après recueil des cellules migrant vers le milieu de culture afin d'apprécier la pigmentation cellulaire. Un examen microscopique de ces cellules a également été pratiqué. Les observations suivantes ont été faites: Pour la 1ère génération LM1 Rétraction peu importante: partant d'un gel de 6 cm de diamètre, on obtient une lattice de 3 cm - Adhérence nulle: la lattice transférée dans un flacon de culture se décolle-.au moindre mouvement - Sortie de cellules: elle équivaut à la multiplication d'une lignée en passage - Pigmentation: beige très clair. MMcoRla etMMcoRlb - L'évolution est la même pour-ces 2 mélanomes Rétraction: 0,8 cm - Adhérence: forte - Sortie de cellules: apparition de colonies visibles à l'oeil nu de cellules tumorales et d'un tapis de cellules d'aspect fibroblastique - Pigmentation: nulle dans les deux cas MMcoR1 c - Rétraction: 1,3 cm - Adhérence: supérieure à celle de MMcoRla et MMcoR1b; le recueil de la population P2 (cf paragraphe 2B) a nécessité que l'on laisse agir la solution de trypsine pendant 15 min. - Sortie de celLules: explosion de nodules tridimensionnels, de cellules tumorales sur un fond de cellules d'aspect fibro- blastique - Pigmentation: nulle Pour la 2ème génération (en faisant référence aux observations précédentes) LN2 - Rétraction et adhérence semblables - Pigmentation nulle - Sortie de cellules: toujours aspect d'une, lignée MMcoR2a et MMcoR2b - Rétraction et adhérence un peu diminuées - Pigmentation inchangée - Sortie de cellules: diminution des cellules d'aspect fibro- blastique qui persistent surtout autour de la lattice. Aspect progressivement proche d'une lignée en passage de cellules tumorales MMcoR2c - Rétraction, adhérence et pigmentation inchangées - Toujours présence de nodules tridimensionnels et de cellules d'aspect fibroblastique, mais d'apparition moins rapide Pour La 3ème génération (en faisant référence aux observations précédentes) LM3 - Evolution similaireavec ralentissement de la croissance cellulaire MMcoR3a et MMcoR3b Rétraction (2,2 cm) et adhérence diminuées, se rapprochant de celle de ACM3 - Sortie de cellules: raréfaction des cellules d'aspect fibro- blastique et apparition d'une croissance de type lignée tumorale MMcoR3c Rétraction inchangée - Adhérence un peu diminuée - Sortie de cellules un peu ralentie, avec colonies visibles à l'oeil nu un peu moindre en nombre et en taille. Persistance des cellules fusiformes dont la croissance est ralentie aussi. Il est important de noter qu'à partir de chacun des 3 mélanomes malins reconstitués de troisième génération (MMcoR3a, MMcoR3b et MMcoR3c) il a été possible, en réassociant les mélanocytes qui en sont issus aux fibroblastes de la suspension F1 initialement utilisée, d'obtenir un mélanome malin reconstitué dont les potentialités sont celles du mélanome malin reconstitué de première génération (soit respectivement MMcoRla, MMcoRlb et MMcoRlc). 26 2 55 11 REVENDICATIONS 1. Tissu reconstitué en trois dimensions, caractérisé en ce qu'il est constitué de cellules différenciées d'un type donné issues d'un expiant d'un tissu, de fibroblastes d'un seul type et de collagène. 2. Tissu reconstitué selor, la revendication 1, caractérisé en ce que ledit expLant provient d'une tumeur. 3. Tissu reconstitué selon la revendication 2, caractérisé en ce que la tumeur est une métastase de mélanome. 4. Tissu reconstitué selon l'une quelconque des revendi- cations 1 à 3, caractérisé en ce que les fibroblastes sont issus d'un angiome. 5. Procédé d'obtention d'un tissu reconstitué, caractérisé en ce que l'on prépare séparément d'une part une population homogène de cellules différenciées d'un type donné et d'autre part une population de fibroblastes, et que l'on met en culture en présence de collagène ces deux suspensions. 6. Procédé d'obtention selon la revendication 5, caractérisé en ce que les cellules différenciées et les fibroblastes sont issus de deux explants différents. 7. Utilisation d'un tissu reconstitué selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, à des fins d'études cliniques ou d'essais pharmacologiques.