FR 2630006 A1 19891020 FR 8805071 A 19880418 La présente invention a pour objet une nouvelle méthode de dosage du "platelet-activating factor" ou PAF. Le "platelet-activating factor" ou PAF est l'un des plus puissants médiateurs chimiques de nature lipidique actuellement identifiés; il est impliqué dans une variété de conditions physiopathologiques (thrombose artérielle, inflammation aig e, choc endotoxique, réactions allergiques aigles, ovoimplantation), ce qui explique l'importance attachée par les Chercheurs à la mise au point d'un test de détermination sensible, spécifique de ce puissant média- teur. La caractérisation du PAF et son obtention ont été décrites pour la première fois par BENVENISTE et al. rJ. EXP. MED., 136 (1972), pp. 13567, puis sa présence dans les leucocytes humains (BENVENISTE, NATURE, 249 (1974), pp. 581], ses actions d'agrégation et de sécrétion sur les pla- quettes humaines, et la plupart de ses caractéristiques physicochimiques, y compris sa nature phospholipidique, ont ensuite été démontrées [BENVENISTE et al., LANCET, 1 (1975), pp. 344; BENVENISTE et al., NATURE, 269 (1977), pp. 1703 La poursuite des travaux sur le PAF a permis de mettre en évidence que celui-ci est un éthérophospholipide dont la caractérisation chimique a permis d'établir sa structure comme étant celle d'une 1-0-alkyl-2-acétyl-sn- glycérol-3-phosphorylcholine qui répond & la formule ci- après: CH2- O- (CH2)CH3 CH-C-O-CH O- *CH3 O CHOPCnH2 3 3 CH2- 0 - P - C2- CH2N CH 0 À0 CH3 o n est égal à 15 ou 17. [BENVENISTE et al., CR Acad. Sci. (III) 289, page 1017 (1979); DEMOPOULOS et al., J. BIOL. CHEM., 254, page 9355 (1979) J. 2. Son implication dans les processus inflamma- toires et allergiques a été démontrée et il joue un rôle dans le système immunitaire et sur le système nerveux central. La détection de cette molécule est difficile car les quantités de PAF produites dans les divers systèmes biologiques étudiés sont de l'ordre du nanogramme ou du fentogramme et requièrent des systèmes de dosage sensibles. Cependant la compréhension du rôle du PAF aussi bien dans les processus physiologiques normaux que dans les états pathologiques requiert que l'on puisse détecter et mesurer ce puissant médiateur même à de très faibles concentrations. Plusieurs méthodes de dosage ont été proposées à cet effet: la réalisation de tests basés sur les propriétés du PAF de stimulateur de l'agrégation de plaquettes humaines ou lapines. Bien que de telles méthodes soient sensibles, leur mise en oeuvre est difficile. En outre, les méthodes basées sur l'agrégation plaquettaire présentent l'inconvénient d'une variabilité qui est inhérente à leur qualité de tests biologiques et d'un manque de fiabilité dû au fait que d'autres substances que le PAF induisent également l'agrégation plaquettaire. Une autre méthode de dosage biologique a été proposée: basée sur la propriété du PAF de stimulateur de la libération des granules de sécrétion plaquettaires, elle consiste à doser les taux de libération des substances générées par les plaquettes, notamment la sérotonine, dont la libération peut être quantifiée si les plaquettes sont préincubées en présence de sérotonine marquée. Les inconvénients de cette méthode sont les mêmes que ceux de la méthode qui utilise l'agrégation plaquettaire. Ces inconvénients, auxquels s'ajoute le fait que les dosages biologiques ont lieu en temps réel en sorte qu'ils ne permettent le dosage. que d'un nombre limité d'échantillons, ont orienté les Chercheurs vers la mise au point de dosages immunologiques, et en particulier de do- sages radioimmunologiques du PAF. NISHIHIRA et al. [J. BIOCHEM., 95 (1984), pages 1247-1251] ont ainsi décrit la production d'anticorps poly- clonaux spécifiques anti-PAF et leur caractérisation par des tests d'agglutination, de double-immunodiffusion, d'inhibition de l'agrégation plaquettaire et de radioimmu- noprécipitation, puis KARASAWA ET AL. rJ. BIOCHEM., 102, 451-453 (1987)] ont décrit la préparation d'anticorps poly- clonaux antl-PAF spécifiques, par immunisation de lapins à l'aide d'un conjugué haptène-BSA, l'haptène étant constitué par un dérivé synthétique du PAF, résistant & l'égard de l'inactivation enzymatique par le plasma ou des tissus et qui peut se lier & la BSA par covalence. L'activité des an- -tlcorps a été déterminée par la technique ELISA; mais le test d'inhibition par la technique ELISA qui visait à mettre en évidence que ces anticorps n'ont pas de réaction croisée avec les anticorps du PAF, introduit une incerti- tude quant à certains dérivés du PAF. La sensibilité de ces dosages immunologiques s'est avérée moins grande que celle des dosages biologiques. Parallèlement au développement des dosages immunologiques, le champ des connaissances concernant les mécanismes d'action des hormones s'est étendu et il s'est avéré que l'action de la plupart des hormones s'exerce par l'intermédiaire de leur liaison à un site récepteur hormone- spécifique intracellulaire ou situé sur la membrane des cellules-cibles et entraînant l'activation d'effecteurs couplés au complexe hormone- récepteur. Les différents récepteurs étudiés présentent des constantes d'association élévées et une haute spécificité. En 1968 fut publiée une méthode de dosage d'hormones utilisant un récepteur cellulaire /kORENMAN, J. CLIN. ENDOCRINOL. METAB. 28, pp. 127, 1968]7, puis LEFKOWITZ et al. [SCIENCE, 170, pp. 633, 1970] ont décrit l'utilisation d'un récepteur de mem- brane cellulaire couplé & un système adénylcyclase, pour le dosage d'hormones et GILMAN, d'une part CPROC. NATL. ACAD. SCI. USA, 67, pp. 305, 19703 et WALTON et al., d'autre part, CBIOCHEMISTRY, 9, pp. 4223, 1970) ont décrit des méthodes de mesure de cAMP en utilisant un récepteur intracellulaire. Les avantages de l'utilisation de récepteurs cellulaires dans un dosage sont nombreux: haute affinité du système récepteur (conférant une bonne sensibilité au dosage développé), - haute spécificité, - données nombreuses sur le système utilisé, sur la spécificité du modèle et sur les caractéristiques biochi- miques, - origines multiples du récepteur: le récepteur peut pro- S15 venir d'espèces différentes ou de tissus différents et pré- senter des caractéristiques communes, contrairement aux ca- ractéristiques des anticorps utilisés dans un dosage, immu- nologique, qui n'auront pas de propriétés similaires s'ils proviennent d'origines différentes. Les dosages d'hormones polypeptidiques & l'aide de radio-récepteurs font application du principe de la compétition entre l'hormone marquée (125I marquée, par exemple), et l'hormone non marquée pour leur fixation à des récepteurs spécifiques de l'hormone considérée. Il semblerait selon les Chercheurs qui ont décrit ces dosages CLEFKOWITZ et al., SCIENCE, Vol. 170, pages 633-635, 6 Novembre 1970C que ceux-ci présentent les avantages des immunoessais tout en présentant la spécificité des méthodes biologiques. HWANG et al. [BIOCHEMISTRY, 22 (1983), pages 4756-4763] ont identifié, en utilisant du PAF marqué par du tritium, ses sites de liaison spécifiques sur des membranes de plaquettes de lapin; ils ont évalué le nombre des sites de liaison à 1,61 (+ 0,34)xl1O'2/mg de membrane, ce qui correspond à environ 150-300 récepteurs/plaquette. Une liaison spécifique du PAF a été démontrée en utilisant des préparations membranaires purifiées de muscles lisses et de leucocytes polymorphonucléaires de rat. Des travaux similaires effectués sur des préparations de membranes de tissus de poumon humain ont montré que ces tissus contiennent des récepteurs spécifiques du PAF JBIOCHEMICAL AND BIOPHYSICAL RESEARCH COMMUNICATIONS, Vol. 128, N' 2 (1985), pages 972-979]. Une protéine de fixation spécifique du PAF a été purifiée et caractérisée à partir de membranes de pla- quettes humaines (VALONE, IMMUNOLOGY, 52 (1984), pages 169- 174; NISHIHIRA et al., TOHOKU J. EXP. MED., 147 (1985), pages 145-152]. Toutefois, les rendements de purification sont faibles et la caractérisation de la molécule isolée en tant que récepteur spécifique du PAF reste à établir. La présente invention s'est, en conséquence, donné pour but de pourvoir à une nouvelle préparation de récepteurs cellulaires du PAF qui présente une grande sta- bilité dans le temps et des propriétés de liaison avec le PAF améliorées, ainsi qu'à une nouvelle méthode de dosage du PAF à l'aide de récepteurs cellulaires, qui est plus sensible et plus spécifique que les méthodes de dosage im- munologique et est plus spécifique que les méthodes de do- sage biologique. La présente invention a pour objet une prépara- tion de récepteur du PAF qui est caractérisée par l'association d'une préparation membranaire de récepteur du PAF avec des agents de protection appropriés. Selon un mode de réalisation de la préparation de récepteur du PAF conforme à la présente invention, les agents de protection susdits sont constitués par un système de stabilisation de la préparation de récepteur, qui com- prend au moins un inhibiteur de protéases. Selon une disposition avantageuse de ce mode de réalisation, ledit système de stabilisation comprend au moins un inhibiteur de pepsine et/ou au moins un inhibiteur de plasmine et/ou au moins un inhibiteur de trypsine et/ou au moins un inhibiteur de papaïne et/ou au moins un inhibi- teur de cathepsine B et/ou au moins un inhibiteur de ca- thepsine D et/ou au moins un inhibiteur de chymotrypsine et/ou au moins un inhibiteur de sérine-protéinase. Selon un autre mode de réalisation de la pré- paration de récepteur du PAF conforme à la présente inven- tion, la préparation membranaire est constituée par des cellules entières ou des fragments de tissus, ou par des plaquettes purifiées isolées à partir de sang de mammifères appropriés, ou par des préparations résultant de la lyse desdites plaquettes, ou par des membranes de plaquettes pu- rifiées, ou par des récepteurs membranaires solubilisés. Selon encore un autre mode de réalisation de la préparation de récepteur du PAF conforme à la présente invention, celle-ci est constituée par une préparation sta- bilisée qui peut être soit lyophilisée, soit congelée. La présente invention a, en outre, pour objet une méthode de dosage du PAF présent dans un échantillon biologique, caractérisée en ce que l'on met en compétition un PAF marqué introduit dans le milieu de dosage, avec le PAF non marqué contenu dans l'échantillon biologique susdit, pour leur occupation des sites récepteurs du PAF présents dans une préparation de récepteur également introduite dans le milieu de dosage. Selon un mode de mise en oeuvre avantageux de la méthode de dosage conforme à l'invention, la préparation de récepteur du PAF susdite est constituée par l'association d'une préparation membranaire de récepteur du PAF avec des agents de protection et/ou de stabilisation appropriés. Selon un autre mode de mise en oeuvre avanta- geux de la méthode de dosage conforme v l'invention, le PAF marqué utilisé-dans la réaction de compétition susdite est un PAF marqué par un radioisotope (125I, 14C, 3H,...) ou par une molécule chimique fluorescente, chimioluminescente, ou par une enzyme. Selon encore un autre mode de mise en oeuvre avantageux de la méthode de dosage conforme à l'invention, la quantité de récepteur et la quantité de PAF marqué mises en oeuvre sont constantes, ce qui a pour effet qu'une augmentation du PAF non marqué dans le milieu de dosage ré- duit la quantité de PAF marqué qui se lie au récepteur. Selon un autre mode de mise en oeuvre de la mé- thode de dosage conforme à l'invention, le complexe molé- cule de PAF (marqué ou non) - récepteur à doser est séparé du PAF non lié au récepteur, par toute technique de sépa- ration appropriée telle que séparation par précipitation, par centrifugation, par filtration sous vide notamment, et le signal porté par la molécule de PAF lié au récepteur, est révélé par tous moyens appropriés. D'une manière connue, les moyens de révélation sont le comptage de la radioactivité, en compteur à scin- tillation, en cas de marquage radioactif, la révélation par un substrat approprié, pour un marquage par fluorescence ou par une enzyme, etc. Selon un mode de mise en oeuvre de la méthode de dosage conforme à l'invention, préalablement à la réali- sation du dosage, l'échantillon biologique contenant le PAF à doser est traité, si nécessaire, pour en extraire le PAF. Selon un autre mode de mise en oeuvre de la mé- thode de dosage conforme à l'invention, le dosage est réa- lisé par établissement d'une courbe faisant apparaître le pourcentage de PAF qui se fixe au récepteur en présence d'un échantillon biologique contenant une quantité de PAF non marqué à doser, et comparaison de cette courbe avec une courbe standard de référence qui montre la décroissance du pourcentage de molécules de PAF marqué qui se fixe au ré- cepteur en présence de quantités progressivement crois- santes de PAF non marqué. Outre les dispositions qui précèdent, l'invention comprend encore d'autres dispositions, qui res- sortiront de la description qui va suivre. L'invention sera mieux comprise à l'aide du complément de description qui va suivre, qui se réfère à des exemples de préparation du récepteur du PAF conforme à la présente invention et de mise en oeuvre de la méthode de dosage qui fait également l'objet de la présente invention. Il doit être bien entendu, toutefois, que ces exemples et les parties descriptives correspondantes sont donnés uniquement à titre d'illustration de l'objet de l'invention, dont ils ne constituent en aucune manière une limitation. EXEMPLES EXEMPLE 1: OBTENTION D'UNE PREPARATION DE RECEPTEUR DU PAF. 1. du sang (environ 40 ml.) prélevé chez un lapin est additionné de 8 ml de tampon ACD, qui est un tam- pon citrate dont la composition est la suivante: Citrate disodique, 2H20 8,5.10-2 M Acide citrique 6,6.10-2 M Glucose 10-l M Ce mélange est centrifugé à 37' C pendant 15 minutes à 250 g. Le culot est rejeté et le plasma riche en plaquettes (PRP) est centrifugé à 37' C, pendant 20 minutes à 600 g; le surnageant est rejeté et le culot est recueilli. o30 2. Le culot est mis en suspension dans du tam- pon Tyrode, pH 7,4, dont la composition est la suivante: Hepes 5 10-3 M Glucose 5,5 10-3 M BSA 0,35 % NaCl 140 mM KCl 2,6 mM NaHCO3 12 mM NaH2PO4,H20 0,42 mM MgCl2 1 mm Apyrase (SIGMA) 0,3 UI/ml EGTA 2 mM Heparine (ROCHE) 50 UI/ml après centrifugation à 37 C, pendant 20 minutes à 600 g, le surnageant est écarté et le culot est recueilli, puis traité dans du tampon TRIS-HCl- NaCl (pH 7,4), dont la composition est la suivante: Tris-HCl 10 mM NaCl1 150 mM 3. La suspension obtenue est centrifugée à 37' C pendant 20 minutes à 600 g; le surnageant est écarté et le culot est additionné de tampon TRIS-HCl, 10 mM, pH 7,0, et d'un système de stabilisation du récepteur du PAF dont la composition est la suivante: "PEPSTATINE" (1) (BOEHRINGER) 0,0025 mg/ml "ANTIPAINE" (2) te 0,0025 mg/ml "LEUPEPTINE" (3) " 0,0025 mg/ml "CHYMOSTATINE" (4) " 0,0025 mg/ml P M S F (5> (SERVA) 2.10-4 M (1) inhibiteur de pepsine et de cathepsine D (2) inhibiteur de papaïne et de trypsine (3) inhibiteur de plasmine, de trypsine, de papaïne et de cathepsine B (4) inhibiteur de chymotrypsine (5) fluorure de phénylméthylsulfonylé inhibiteur de chymotrypsine, trypsine et protéases analogues. 4. On procède à la lyse des plaquettes par trois congélations/décongélations successives. Les pla- quettes lysées sont centrifugées à + 4 C pendant 30 mi- nutes à 50 000 g. Le culot obtenu est repris par le tampon d'incubation et est congelé à 80' C. EXEMPLE 2: OBTENTION D'UNE PREPARATION DE RECEPTEUR DU PAF. Le matériel congelé à - 80' C obtenu en procédant comme décrit à l'Exemple 1 est lyophilisé.- EXEMPLE 3: VERIFICATION DES PROPRIETES DE LA PREPARATION DE RECEPTEUR DU PAF CONFORME A L'INVENTION; L'addition du système de protection et stabilisation décrit à l'Exemple 1 à la préparation membranaire de récepteur du PAF a un double effet: d'amélioration des qualités de liaison et - d'amélioration de la durée de conservation. 3.1 AMELIORATION DES QUALITES DE LIAISON I 3.1.1. Technique de Dosage: Technique de Liaison Matériel: - 1 Aliquot de préparation membranaire de plaquettes de lapin (A) - 1 Aliquot de préparation de récepteur du PAF conforme à l'invention (B), - PAF marqué au Tritium, activité spécifique 56 Ci/mmole (DU PONT DE NEMOURS (Boston MA, USA).) - PAF non marqué (BACHEM, Budendorf, Suisse). Méthodes: Des aliquots de préparations membranaires de plaquettes de lapin (1l00 pg) sont incubés pour un volume final de 200 pl de solution contenant 1 nM de /3H/PAF (15300 cpm) et soit une quantité de PAF non marqué connue (gamme de référence), soit un aliquot de dilution de l'extrait à doser. L'incubation est réalisée en tube de polyéthylène à + 4' C pendant 1 heure 30, avec agitation constante (tampon d'incubation: TRIS-HCl 10 mM + BSA 0,025 %, pH 7,4). Chaque point du dosage est réalisé en triplicate. Arrêt par filtration sous vide: A la fin de la période d'incubation, 3 ml de tampon d'incubation à 4' C sont ajoutés au volume réactionnel et rapidement filtrés sur filtres Whatman GF/C (prétrempés en tampon d'incubation) par aspiration sous vide. Le tube est ensuite rincé 2 fois par 3 ml de tampon. Détection du signal: Les filtres sont placés dans des fioles de comptage avec 4 ml de liquide scintillant (Atomlight NEN). La radioacti- vité est quantifiée sur compteur à scintillation LKB Rack beta 1214. Analyse des résultats: La différence entre la quantité de P/HJPAF lié aux mem- branes en absence et en présence d'un excès de PAF non mar- qué (1000 x LH] PAF) est considérée comme liaison spé- cifique maximale (B'). Les résultats sont analysés (logit) à partir de la liaison spécifique. 3.1.2. La Figure 1 annexée montre une augmenta- tion significative du signal représentée par une augmenta- tion de x 2,5 de la quantité de P3H] PAF lié spécifiquement à la préparation B conforme à l'invention par rapport à la quantité liée à la préparation A ne contenant pas de sys- tème de stabilisation. 3.2. Amélioration des délais de conservation: Sans traitement, la qualité des prépara- préparations de membranes de plaquettes n'est conservée que pour une durée ne dépassant pas 10 jours. Le traitement par le système de stabilisa- tion permet de maintenir les qualités des préparations de membranes sans altération jucqu'à un délai supérieur à un mois. La lyophilisation des préparations de ré- 1Z cepteur du PAF conformes à l'invention ne modifie pas les propriétés de liaison avec le /3H /PAF et les durées de conservation sont encore augmentées. 3.3. Spécificité: Le site de liaison présent sur les prépa- rations de membranes est spécifique pour la structure PAF. Plusieurs molécules, telles que le lyso-PAF (dérivé métabo- lique du PAF) ou divers phospholipides, ne sont pas reconnus par le site de liaison utilisé pour le dosage (dose maximale testée: 10-M). Cf. Figure 2 dans laquelle la spécificité est exprimée en valeurs normalisées (B/Bo) en fonction de la concentration de PAF (Gamme standard) ou de l'analogue testé (exprimé en nM). EXEMPLE 4: DETERMINATION DE LA QUANTITE DE PAF PRESENTE DANS UN ECHANTILLON BIOLOGIQUE 4.1. Caractéristiques du dosage: Les caractéristiques du dosage ont été déterminées sur quatre expériences prises au hasard (indé- pendamment du lot de préparation et de la durée de conser- vation). Sensibilité: déterminée par l'ED5o (dose de PAF standard nécessaire pour inhiber 50 % de la liaison spécifique). EDso = 5,73 x 1,38nM (0,63 À 0,15 ng/tube). Limite de détection: : déterminée à partir du profil d'erreur représenté à la Figure 3: le coefficient de va- riation a été déterminé sur quatre expériences prises au hasard. Calcul du coefficient de variation: [ Coefficient de variation = ___t x] _Cv XT !dose théorique de PAF standard X moyenne des valeurs lues de manière indi- viduelle sur la courbe standard définie par la moyenne de 4 expériences. én-: cart type pondéré par n-1, calculé sur les valeurs déterminées individuellement. Le coefficient de variation est exprimé en fonction du B/Bo (donné en pourcent). La partie de la courbe dont le coefficient de variation est inférieur ou égal & 10 %-15 % est utilisable pour le dosage. Limite inférieure (B/Bo= 15 %): 0,9 x 0,1 RnM (minimum détectable) (0,1 + 0,01 ng/tube) Limite supérieure:100 nM (11 ng/Tube) (maximum détectable), ces deux paramètres définissent l'ordre de grandeur dont il doit être tenu compte lors des dilutions des échantillons à doser. 4.2. La gamme standard est établie pour une sé- rie de concentrations de PAF standard réparties de façon équidistante en représentation logarithmique entre 0,1 nM et 1000 nM. Le pourcentage de [PH 7PAF lié spécifiquement aux préparations en présence de ces différentes concentrations est déterminé par rapport & la quantité de ú3H 7PAF lié spécifiquement en absence de PAF standard non marqué (B/Bo: B: cpm de PH JPAF lié aux membranes en pré- sence de PAF standard (liaison non spécifique déduite). Bo: cpm de [PH JPAF lié aux membranes en absence de PAF standard (liaison non spécifique déduite). La liaison non spécifique est déterminée par un excès de PAF non marqué (1000 nM, soit un facteur 1000 par rapport à la quantité de [3H]PAF utilisé). La Figure 4 annexée indique une gamme standard typique obtenue à partir des préparations de membranes de plaquettes de lapin. Les valeurs de PH JPAF sont reportées directe- ment en cpm sur la gamme standard.. Sur cette courbe le Bo est de 9000 - 2900 = 6100 cpm le non spécifique est de 2900 cpm. Les déterminations de PAF des échantillons sont obtenues par interprétation sur la courbe standard. La lecture des valeurs sur la représentation directe étant peu aisée, de par l'allure sigmoïde de la courbe, plusieurs transformations des résultats pouvant être utilisées pour linéariser la courbe. La transformation la plus utilisée est la transformation logit du pourcentage de reponse. Sur la Figure 5 est représentée la transforma- tion logit des résultats. Description de la transformation logit: Cette méthode de linéarisation est largement décrite dans la littérature; elle est dérivée de la repré- sentation de Hill. Représentation de Hill B Y= Log B en fonction de Log F Bm - B (Hill A.V. (1910)J Physiol 40 180) B: Quantité de ligand liée spécifiquement pour une quantité totale de ligand libre F B.: capacité maximale de liaison spécifique. Représentation logit: Y = Log B/Bo en fonction de Log F - B/Bo B: quantité de ligand liée spécifiquement pour la dose F de ligand non marqué présente, Bo: quantité de ligand lié spécifiquement en absence de ligand non marqué. Pour chaque point, il est soustrait la valeur de la liaison non spécifique déterminée par excès de PAF standard. Le Bo est déterminé par la quantité de 1H]PAF lié spécifiquement en absence de PAF standard: Logit: Log B/Bo 1 - B/Bo La détermination de la quantité x de PAF pré- sente dans l'échantillon se fait par interpolation des pourcentages d'inhibition de la quantité x sur la liaison du [3H JPAF après transformation en logit. 4.3. Selon la nature de l'échantillon à doser, le PAF peut être dosé soit par dosage direct (si l'échantillon est peu riche en éléments contaminants), soit par dosage après extraction. L'échantillon doit être dilué ou concentré, suivant les cas, de manière à ce que les valeurs de PAF inconnues soient dans les limites du dosage (limite infé- rieure: 0,9 nM; limite supérieure 100 nM). Dans le cas o l'on choisit de doser après ex- traction, on extrait le PAF de l'échantillon par la méthode de BLIGH et DYER fCAN. J. BIOCHEM. PHYSIOL., 37 (1959), pages 911-918_, en procédant comme suit: - On arrête les réactions par addition au mi- * lieu biologique de méthanol et de chloroforme (1:1:1 v/v/v par rapport au volume de milieu biologique dont le PAF est à extraire). - Agitation 10 minutes (Vortex), - Séparation de phase amorcée par centrifu- gation (100 g, 5 minutes); - Prélèvement de la phase organique, - Lavages (2) par addition de chloroforme. (Le milieu biologique peut être, suivant les cas, soit un milieu de culture ou d'incubation, soit un broyat de tissus.) Préparation de l'extraction pour le dosage: Evaporation à sec de la phase organique, puis reprise par du tampon d'incubation (TRIS-HC1 lOmM BSA 0,025 % pH 7,4) . Réalisation de dilutions successives (entre 10-10H et 10-6M final dans le tube d'incubation) permettant le dosage du PAF contenu dans l'extrait. Ainsi que cela ressort de ce qui précède, l'invention ne se limite nullement à ceux de ses modes de mise en oeuvre de réalisation et d'application qui viennent d'être décrits de façon plus explicite; elle en embrasse au contraire toutes les variantes qui peuvent venir à l'esprit du technicien en la matière, sans s'écarter du cadre, ni de la portée, de la présente invention. REVENDICATIONS 1') Préparation de récepteur du PAF, caractérisée par l'association d'une préparation membranaire de récepteur du PAF avec des agents de protection appropriés. 2') Préparation de récepteur du PAF, selon la Revendication 1, caractérisée en ce que les agents de protection susdits sont constitués par un système de stabilisation de la préparation de récepteur, qui comprend au moins un inhibiteur de protéases. 3') Préparation de récepteur du PAF selon la Revendication 2, caractérisée en ce que ledit système de stabilisation comprend au moins un inhibiteur de pepsine et/ou au moins un inhibiteur de plasmine et/ou au moins un inhibiteur de trypsine et/ou au moins un inhibiteur de papaïne et/ou au moins un inhibiteur de cathepsine B et/ou au moins un inhibiteur de cathepsine D et/ou au moins un inhibiteur de chymotrypsine et/ou au moins un inhibiteur de sérine-protéinase. 4') Préparation de récepteur du PAF selon l'une quelconque des Revendications 1 à 3, caractérisée en ce que la préparation membranaire est constituée par des cellules entières ou des fragments de tissus, ou par des plaquettes purifiées isolées à partir de sang de mammifères appropriés, ou par des préparations résultant de la lyse desdites plaquettes, ou par des membranes de plaquettes pu- rifiées, ou par des récepteurs membranaires solubilisés. ') Préparation de récepteur du PAF selon l'une quelconque des Revendications 1 à 4, caractérisée en ce qu'elle est constituée par une préparation qui peut être soit lyophilisée, soit congelée. 6') Méthode de dosage du PAF présent dans un échantillon biologique, caractérisée en ce que l'on met en compétition un PAF marqué introduit dans le milieu de do- sage, avec le PAF non marqué contenu dans l'échantillon biologique susdit, pour leur occupation des sites récepteurs du PAF présents dans une préparation de récepteur également introduite dans le milieu de dosage. 7) Méthode de dosage selon la Revendication 6, caractérisée en ce que la préparation de récepteur du PAF susdite est constituée par l'association d'une préparation membranaire de récepteur du PAF avec des agents de protection et/ou de stabilisation appropriés. 8') Méthode de dosage selon l'une quelconque des Revendications 6 et 7, caractérisée en ce que le PAF marqué utilisé dans la réaction de compétition susdite est un PAF marqué par un radioisotope approprié (125I, 14C, 3H,..) ou par une molécule chimique fluorescente, chimioluminescente, ou par une enzyme, notamment. 9 ) Méthode de dosage selon l'une quelconque des Revendications 6 à 8, caractérisée en ce que la quantité de récepteur et la quantité de PAF marqué mises en oeuvre sont constantes, ce qui a pour effet qu'une augmentation du PAF non marqué dans le milieu de dosage réduit la quantité de PAF marqué qui se fixe au récepteur. 10 ) Méthode de dosage selon l'une quelconque des Revendications 6 à 9, caractérisée en -ce que le complexe molécule de PAF marqué ou non - récepteur, à doser, est séparé du PAF non lié au récepteur, par toute technique de séparation appropriée et le signal porté par la molécule de PAF lié au récepteur, est révélé par tous moyens appropriés. 11') Méthode de dosage selon l'une quelconque des Revendications 6 à 10, caractérisée en ce que, préalablement à la réalisation du dosage, l'échantillon biologique contenant le PAF à doser est traité pour en extraire le PAF. 12') Méthode de dosage selon l'une quelconque des Revendications 6 à 11, caractérisée en ce que le dosage est réalisé par établissement d'une courbe faisant apparaître le pourcentage de PAF qui se fixe au récepteur en présence d'un échantillon biologique contenant une quantité de PAF non marqué à doser, et comparaison de cette courbe avec une courbe standard de référence, qui montre la décroissance du pourcentage de molécules de PAF marqué qui se fixe au récepteur en présence de quantités progressivement croissantes de PAF non marqué.