FR 2627779 A1 19890901 FR 8802405 A 19880226 La présente invention concerne un procédé d'épaississement de produit du type lait fermenté, no- tamment de yaourt ainsi que les produits, notamment les yaourts obtenus par ce procédé. La présente invention -concerne également un nouveau polysaccharide utile pour la mise en oeuvre de ce procédé. Enfin, la présente invention concerne un procédé de préparation dudit poly- saccharide. Le produit que l'on désigne sous le nom de yaourt correspond à un aliment du type lait fermenté préparé par acidification du lait à l'aide de deux fer- ments lactiques, les bactéries Streptococcus thermophilus et Lactobacillus bulgaricus. Peuvent également rentrer dans la composition du yaourt des constituants tels que de la poudre de lait, du sucre ou des adjuvants fruités. En revanche, l'adjonction d'autres composés exogènes est déconseillée pour que soient conservées les qualités-de naturel et organoleptiques du produit. En particulier, l'adjonction d'agents de texture épaississants exogènes, tels que certains polysaccharides extraits des algues ou dérivés de la cellulose comme la CMC (carboxy-méthyl- cellulose) employés dans l'alimentation, notamment les desserts, les sauces, etc., est à éviter. On distingue trois catégories de yaourts selon leur texture: les yaourts liquides ou à boire, les yaourts brassés, produit lié, onctueux, souple et lisse mais d'une certaine épaisseur, * les yaourts fermes, d'aspect plus gélatineux. Le yaourt liquide est le produit naturellement obtenu. Pour préparer un yaourt brassé ou ferme, il est nécessaire d'ajouter dans la préparation de la poudre de lait écrémé qui constitue un apport de matière sèche et de protéines donnant sa texture épaisse au yaourt. Le yaourt ferme se prépare directement par fermentation en petit pot avec appoint en poudre de lait. Le yaourt brassé, en revanche, est préparé par fermentation en cuve, par exemple des cuves de 3000 1. Après culture, le produit devient épais, il est soutiré de la cuve, pompé, refroidi et conditionné en petit pot. Il pert, au cours de ces opérations mécaniques, une grande partie de sa texture épaisse. Or, les études réalisées auprès des consomma- teurs révèlent leur goût prononcé pour ces yaourts du type brassé, souple et lisse avec toutefois le souhait que ce type de produit puisse présenter une consistance plus épaisse. Un but de la présente invention était donc de satisfaire à cette demande en proposant un yaourt à texture plus épaisse qui conserve les qualités de natu- rel et organoleptique du produit. Pour ce faire, il n'était pas possible d'aug- menter la quantité de poudre de lait rentrant dans la préparation du yaourt, au-delà de 5 % en fonction de limitations légales d'une part, mais, d'autre part, justi- fié par des considérations d'ordre organoleptique. C'est pourquoi, la présente invention a pour objet un procédé d'épaississement d'un produit du type lait fermenté, notamment de yaourt, caractérisé en ce qu'on ajoute audit produit un ou des polysaccharides) préparé(s) à partir de bactérie(s) lactique(s), notam- ment de l'espèce Streptococcus thermophilus et/ou Lactobacillus bulgaricus. On peut citer comme autres bactéries lactiques, les bactéries lactobacillus acidophilus ou des bactéries du genre bifido bactérium telles que le bifido bactérium bifidum. Les bactéries lactiques mises en culture pro- duisent en effet des polysaccharides. Ces polysaccharides sont des exopolysaccharides sécrétés sous forme de gel dans le milieu de culture. On a découvert selon l'invention que ces polysaccharides incorporés aux yaourts leur con- féraient une texture plus épaisse sans nuire à leurs qua- lités organoleptiques. Avantageusement, les souches bactériennes, uti- lisées selon la présente invention, sont sélectionnées en fonction de leur caractère épaississant, c'est-à-dire de leur faculté à produire ces polysaccharides. On pourra utiliser des ferments lactiques dispo- nibles dans le commerce. I1 est également tout à fait avantageux d'uti- liser des polysaccharides produits par culture des bacté- ries lactiques mentionnées ci-dessus dans des milieux et conditions de culture identiques à ceux de la fabrication du produit de type lait fermenté, notamment du yaourt, dans lequel ils seront incorporés. Ainsi seront préservées au maximum toutes les qualités naturelles du produit. En général, le milieu et les conditions de cul- ture selon la présente invention correspondent donc à du lait fermenté avec 1 à 5 %, de préférence 3 % en poids de ferment(s) lactique(s) à une température de 30 à 45 C, de préférence 40 à 45 C pendant une durée de 2 à 5 heures, de préférence 3 h à 4 h 30 mn. Le lait peut être du lait natu- rel, mais également du lait reconstitué. Il peut s'agir de lait écrémé ou encore de lait-stérilisé. Dans le procédé selon l'invention, les poly- saccharides peuvent être ajoutés au yaourt dans des quantités dépendant de la texture recherchée pour le yaourt obtenu. On peut citer par exemple une quantité de polysaccharides comprise entre 0,1 et 0,5 % du poids de yaourt. L'espèce Streptococcus thermophilus fournit le caractère épaississant le plus marqué; c'est pour- quoi, selon un mode de réalisation préféré du procédé selon l'invention, le polysaccharide est produit par une bactérie de cette espèce. En particulier dans les conditions de culture utilisées dans la fabrication des yaourts, Streptococcus thermophilus produit un gel visqueux particulièrement épaississant. Ce gel est dû à un polysaccharide spéci- fique. La présente invention a également pour objet ce nouveau polysaccharide utile dans le-procédé selon l'invention,de masse moléculaire de l'ordre du million composé de galactose, glucose et de Nacétylgalactosamine dans les rapports molaires 2:1:1 respectivement, poly- saccharide constitué d'unités de répétition tétrasaccha- ridique comportant un glucose en configuration a en position 1, deux galactoses en configuration a sur le carbone en position 1 et une Nacétyl-galactosamine en configuration B sur le carbone en position 1. Plus précisément, ce polysaccharide répond à la formule générale suivante: 3 Gal 1l - Glc al -3 GalNAc al Gal B1 n dans laquelle le glucose est substitué en 3 et en 6. dans laquelle un résidu galactose externe de forme S se trouve branché sur la molécule de glucose de forme a selon une liaison 1 - 3 ou 1 - 6. Selon la présente demande, on entend par glucose a1 un composé de formule: 6CH OH H H glucose al H O H H O 2 H OH On entend par galactose 1 un produit de formule: HO GCH 20H OI galactose E1 OH H H OH On entend par N-acétyl-galactosamine a1 un produit de formule: CH OH Nacétyl-galactosanine a1 HO H OH H O H NH-COCR3 Comme on l'a vu, ce nouveau polysaccharide peut êtra obtenu-par culture de bactéries lactiques de l'es- pèce Streptococcus thermophilus dans des conditions de culture correspondant aux conditions dans lesquelles en présence de deux bactéries Lactobacillus bulgaricus et Streptocossus thermophilus un yaourt serait obtenu. C'est-à-dire qu'il s'agit d'un milieu comportant du lait écrémé, par exemple du lait écrémé reconstitué stérilisé qui est ensemencé avec des germes de Streptococcus ther- mophilus que l'on laisse fermenter à 43 C. Par exemple, ce polysaccharide peut être pro- duit à partir des souches SODIMA 53, SODIMA 822 et SODIMA 413 mises en culture dans du lait reconstitué sté- rilisé avec un inoculum de 3 % de bactéries en poids; la fermentation étant réalisée à 43 C jusqu'à pH 5, soit envi- ron 4 heures. Lorsque la culture est terminée, le milieu est divisé en une fraction liquide et une fraction bacté- rienne. A partir de ces deux fractions, le polysaccha- ride peut être obtenu par des opérations d'isolement et d'extraction connues de l'homme de l'art, telles que filtration sur gel, chromatographie par échange d'ions, relargage, dissolution fractionnée, dialyse. Ces tech- niques peuvent être utilisées séparément ou prises en com- binaison. Compte tenu de ces conditions de culture, des qualités rhéologiques, ainsi que des considérations évoquées précédemment relatives aux soucis de préserver au maximum les qualités naturelles du yaourt, ce poly- saccharide est particulièrement utile dans le procédé de fabrication de yaourt à texture épaisse selon l'in- vention. En effet, ce polysaccharide offre toutes les garanties d'un produit endogène dans la mesure o il est produit à partir d'une des bactéries du yaourt et dans des conditions de culture identique à celle conduisant au yaourt. identique à celle conduisant au yaourt. Ce polysaccharide pourra aussi être employé dans d'autres produits lactés et diététiques, desserts, sauces et autres produits alimentaires, le secteur ali- mentaire ne représentant cependant qu'une partie de ses applications possibles. En outre, dans la présente demande on parIe principalement de yaourt, mais il est bien entendu que le polysaccharide ainsi que le procédé selon l'invention peuvent s'appliquer de même à toute la gamme des produits similaires, liquides ou semi-liquides, fabriqués par fermentation du lait. D'autres caractéristiques et avantages de la présente invention apparaîtront à la lumière des exemples qui vont suivre donnés à titre illustratif et non limi- tatif de la présente invention. Sur la figure 1 est représentée une courbe de détermination de la masse moléculaire du polysaccha- ride Streptococcus thermophilus par chromatographie de gel filtration sur Sépharose 4-B. Sur la figure 2 est représenté un spectre de résonance magnétique nucléaire de C-13 du poiysaccharide (50 mg) de Streptococcus thermophilus (SODIMA 53) (I-733). Sur la figure 3, est représenté un spectre de chromatographie HPLC d'un lait reconstitué stérilisé ensemencé par Streptococcus thermophilus (SODIMA 822) (I-735) soniqué et filtré, injecté sur colonne couplée d'AX-300 et TSK-250. Détection UV 206 nm (A) et réfracto- métrique (B). Le diagramme (C) correspond à la chromato- graphie HPLC du polysaccharide isolé par hydrolyse prona- sique. Sur la figure 4 sont représentés les groupes de viscosité d'un yaourt avec (0,025 %) et sans poly- saccharide. EXEMPLE 1 - Polysaccharide produit par Streptococcus thermophilus cultivé sur milieu lacté. 1. Souche utilisée Les souches utilisées sont de l'espèce Streptococcus thermophilus, elles proviennent de ferments commerciaux SODIMA pour yaourt brassé. Ces souches sont conservées à l'état congelé dans l'azote liquide (-196 C). Elles sont référencées dans la collection particulière du Centre National de Culture de Microorganisme de l'Institut Pasteur, 25 rue du Docteur Roux - 75724 PARIS CEDEX 15, o elles ont été déposées le 12 février 1988. Ont été utilisées trois souches différentes provenant des ferments SODIMA 53 (CNCMI-733), SODIMA 822 (CNCM 1-735), SODIMA 413 (CNCM 1-734). 2. Conditions de'culture Apres une préculture sur 10 ml de lait écrémé reconstitué stérilisé, une inoculation de 1 % en poids 7 9 de ferments lactiques (10 à 10 germe/ml d'inoculum) est réalisée sur un lait reconstitué à 147 g/1 écrémé et stérilisé. La fermentation est réalisée à 43 C jus- qu'à pH 5, puis le produit est conditionné à chaud après lissage au laboratoire dans des pots stérilisés de 125 g. Ces pots sont immédiatement refroidis en chambre froide, puis stockés à 7 C. Le lendemain, les échantillons sont expédiés en.condition, réfrigérés au laboratoire pour extraction du polysaccharide. 3. Extraction du Ro1ysaccharide 1 litre de lait fermenté par Streptococcus thermophilus est dialysé 3 jours à + 4 C contre de l'eau désionisée. L'adialysable est ensuite lyophilisé. Le lyophilysat, repris par un tampon acétate de calcium mM à.pH 8 à-la concentration de 10 p.cent, est hydro- lysé par la pronase (Calbiochem, Enzyme/substrat: 1/50, 37 C, 48h) en présence de toluène pour inhiber la crois- sance bactérienne. L'hydrolysat est amené à pH 4,5 par de l'acide acétique et le matériel macromoléculaire précipité par 10 volumes d'éthanol. Ce protocole expé- rimental est répété deux fois. A la fin de la troisième hydrolyse, la protéine enzymatique est précipitée par l'acide trichloracétique à 10 % (vol/vol). Après contri- fugation, le surnageant est purifié-par passage sur ré- sine échangeuse de cations (Dowex 50x8) et d'anions (Dowex 1x8). Après concentration, le matériel macromolé- culaire est précipité par 10 volumes d'éthanol. Après centrifugation, le précipité est repris par-de l'eau et lyophilysé. Le polysaccharide est purifié par chromato- graphie de gel filtration (20 à 25 mg de précipité pro- nasique dans 1 ml d'acétate d'ammonium 100 mM) sur colonne de Séphacryl S-1000 (50x1,6 cm, Pharmacia). L'élu- tion est réalisée par de l'acétate d'ammonium 100 mM à débit de 1 ml/min. Le matériel glucidique est détecté par réfractométrie. 4. Masse moléculaire La masse moléculaire du polysaccharide est estimée par chromatographie de gel filtration effectuée sur une colonne (92 x 1,8 cm) de Sépharose-4B étalonnée à l'aide de dextrans 5.106; 5.105; 2,3.10; 4. 104; 1.104 (Sigma) et de lactose. La chromatographie est déve- loppée à l'aide d'un tampon phosphate 5mM, pH 6,15 à ml/h. La détection est effectuée à l'aide d'un réfrac- tomètre. 5. Composition en monosaccharides_du_2olsaccha- ride Les rapports molaires en monosaccharides sont effectués - après hydrolyse trifluoroacétique (ATFA 4N,4h,100 C) par chromatographie en phase gazeuse des polyols acé- tates sur colonne capilliare (0,32 mm x 30 m) de silicone OV 101, température programmée de 130 C à 240 C à raison de 2 C/min. et par chromatographie d'ex- clusion d'ions sur colonne d'HPX-87H (Biorad, 30x0,78 cm) éluée par de l'acide sulfurique 0,008N à un débit de 0,6 ml/min. Les monosaccharides sont détectés par ré- fractométrie. - après méthanolyse (MeOH/HCl 0,5N,80 C,24h) par chromato- graphie en phase gazeuse sur colonne (0,3x300 cm) de silicone OV 210 des méthylglycosides trifluoroacétylés selon le protocole expérimental de Zanetta et al. (1). 6. Méthylation Le polysaccharide (0,5 mg) est méthylé par la méthode de Paz-Parente et al. (2) au lithium méthyl sul- finyl carbanion, iodure de méthyle et les éthers méthy- liques identifiés par chromatographie en phase gazeuse couplée au spectromètre de masse selon la méthode de Fournet et al. (3). 7. Résonance maqnétiQue nucléaire du C-13 Le spectre de résonance magnétique nucléaire' du C-13 à 100.614 MHz en abondance naturelle a été obtenu sur un spectromètre BRUKER AM-400 WB couplé à un calcu- lateur ASPECT 3000 (Centre Commun de Mesures, USTL- Flandres-Artois). L'échantillon (50 mg/1 ml D20) a été analysé à 80 C en utilisant le programme standard 1 1 POWGATE.AU (1H Broad-band with WALTZ decoupling). D1=délai de préparation=0.1s; PW=90 =6gs; S1=S2=1 Watt. La fenêtre spectrale est de 26000 Hz pour 32K (SI=TD) ce qui nous donne un temps d'acquisition de 0.623s et une résolution de 1.606Hz par point. Le nombre total d'acquisition est de 16800. Les déplacements chimiques sont mesurés par rapport au TMSP-D4 (Trimé- thylsilyl-2,2',3,3'-D-Propionate de sodium) utilisé comme référence interne (cH3=O.O ppm), avec une précision de l'ordre de 0.1 ppm. 8. Caractérisation du 1olysaccharide Le traitement d'un litre de culture lactée conduit à l'obtention de 40 mg de polysaccharide en moyenne. La chromatographie de gel filtration sur Sépharose-4B indique une masse moléculaire apparente comprise entre 800.000 et 1.000.000 (Figure 1). Les' chromatographies en phase gazeuse des monosaccharides libérés par hydrolyse et par mnéthanolyse montrent que le polysaccharide est constitué de galactose, glucose de N-acétylgalactosamine dans les rapports molaires 2:1:1 respectivement. Les rapports molaires en éthers méthyliques obtenus après méthanolyse et acétylation du polysaccharide permétylé sont donnés dans le tableau 1. Ce résultat indique que le polysaccharide est constitué d'unité de répétition tétrasaccharidique dans laquelle un résidu de galactose externe est branché sur la.molé- cule de glucose en liaison 1-3 ou 1-6. Les spectres de résonance magnétique nuclé- aire du C-13 confirme la présence d'unités tétrasaccha- ridiques de répétition dans le polysaccharide par l'iden- tification de 24 carbones (figure 2). Les carbones ano- mériques à 106.28 ppm et 105.92 ppm correspondent aux carbones 1 en configuration B des deux résidus de galac- tose, le carbone anomérique à 101.02 ppm correspond au C-1 en configuration a du résidu de glucose et le car- bone anomérique à 97.23 ppm correspond au C-1 en configuration a de la Nacétylgalactosamine. D'autre part, l'identification du signal à 24.92 ppm, correspondant au carbone du groupement méthyle d'un acétamido, confirme la présence d'une osamine dans l'unité de répétition du polysaccharide. Sur la base des résultats de la compo- sition en monosaccharides, de la perméthylation et de la résonance magnétique nucléaire du C-13, nous pouvons dé- duire la structure suivante pour l'unité tétrasacchari- dique de répétition du polysaccharide: 3 Gal S1 - Glc a1 -3 GalNAc al Gal B1 n dans laquelle le glucose est substitué en 3 et en 6. TALEAU 1: RAPPORTS MOLAIRES EN ÉTHERS MÉTHYLIQUES OBTENUS PAR MÉTHANOLYSE DU POLYSACCHARIDE PERMÉTHYLÉ. 2,3,4,6- 2,4,6- 2,4- 4,6- Me -Gal Me -Gal Me -Glc Me2-GalNAcNMe 1.3.34 1 0.88- 1.3 1..34 1 0.88 9. Essai d'identification et de dosage du po19sacchardearcrmt2he gide ar chromatoaphie liquide haute performance (HPLC) Le protocole expérimental d'obtention du poly- saccharide tel que décrit ci-dessus permet de préparer des quantités intéressantes d'hydrocolloides, mais il est trop long pour être appliqué à des études comparatives de production de polysaccharides par des souches diffé- rentes. C'est pourquoi a été mise au point une nouvelle méthode d'identification et de dosage du polysaccharide dans le yaourt. Des résultats intéressants ont été obtenus par chromatographie liquide haute performance, de yaourt sur colonne couplée d'échangeurs d'anions et de gel filtration. A. Matériels et Méthodes. 1) Préparation de l'échantillon ml de lait reconstitué stérilisé ensemencé par une souche de streptocoque SODIMA 822 (I-735) sont soniqués pendant 15 minutes à l'aide d'un appareil de sonication "Sonifer cell disruptor B-30" équipé d'une microsonde (pulsation intermittente à 50 % toutes les secondes). Le produit obtenu est filtré successivement à l'aide de seringue Hamilton sur filtres 0,45 gm (2 fois, Millex-HA 0,45 Am), 0,22 Nm (Millex-GS 0,22 Nm) et Sep-Pak (C-18 cartridges for rapid preparation, Waters). 2) Chromatographie liquide haute pression 400 gl de l'échantillon sont injectés sur un échangeur d'anion (AX-300 Aquapore anion, 250x4,6 mm, Brownlee Labs) couplé à une colonne de gel filtration (Bio-Sil TSK-250, 300x7,5 mm, Bio-Rad). Les colonnes sont équilibrées dans un tampon phosphate 0,05 M, pH 6,5. L'élution est réalisée par ce tampon à un débit de 1 ml/min (HPLC Spectra Physics 8700, pression 60 bars). Toutes les trois injections, les protéines retenues par l'échangeur d'anions sont décrochées par le même tam- pon phosphate additionné de 0,5 M en chlorure de sodium. La détection est réalisé en UV à 206 nm (LDC/Milton Roy, atténuation 0,05) et par réfractométrie (Spectra Physics 6040, atténuation 4). B. Résultats. La figure 3 illustre les résultats HPLC de l'échantillon de lait reconstitué, soniqué et filtré. Le pic de temps de rétention 7,1 min correspond au poly- saccharide, qui n'est pas retenu par l'échangeur d'anions et qui est exclu par la colonne de gel filtration. Ce pic possède le même temps de rétention que celui obtenu par chromatographie HPLC du polysaccharide isolé après hydrolyse pronasique et gel filtration. Afin de vérifier l'identité de.composition entre le polysaccharide isolé par la méthode classique et celui identifié par HPLC, nous avons réalisé des chromatogra- phie semi-préparative en HPLC selon le protocole expéri- mental décrit ci-dessus. Les dosages en monosaccharides des poly- saccharides ainsi obtenus sont donnés dans le tableau suivant: monosaccharides polysaccharides Gal Glc GalNAc PolysacchalPr6paration classique 2.16 1 0.92 ride obte nu à par- I rir de la Préparation HPLC 2. 19 1 0.92 souche SODIMA 53 (I-733) * polysaccharide obtenu par HPLC à partir streptocoque souche SODI.A 822 1. 91 1 0.77 (I-735) calculés sur la base d'un résidu de glucose. Les conclusions qui peuvent être tirées de ces résultats sont les suivantes: - L'identification du polysaccharide produit par la bacté- rie, par HPLC du yaourt après sonication et filtration est possible. - La macromolécule préparée de cette façon possède une composition en sucre identique à celle obtenue par le procédé ancien (2:1:1). - Une application de la méthode à l'identification du polysaccharide excrété par une autre souche de Strepto- coque permet de conclure à l'identité de composition en monosaccharides des deux polysaccharides obtenues par deux souches de Streptococcus Thermophilus. EXEMPLE 2: Propriétés épaississantes du polysaccharide. I - Objectif: Déterminer la viscosité intrinsèque [n] de la molécule polysaccharide, c'est-à- dire le volume hydrodynamique qu'occupe la macromolécule dans un solvant donné. II - Matériels et Méthodes La détermination de [n]o nécessite des mesures de la viscosité apparente n D à plusieurs niveaux de concentration. La viscosité intrinsèque est alors déterminée selon l'équation (1) rSp S = - o + X [n]. (1)C c avec Y Spn = sol sol avec no = viscosité apparente de la solution rol = viscosité apparente du solvant C = concentration de la macromolécule dans le solvant et rp = viscosité spécifique X = coefficient de HUGGINS. La détermination de no a été réalisée grâce à un rhéomètre à basse vitesse de cisaillement (Y) le "Low shear 30" (CONTRAVES). Le solvant utilisé est un tampon citrate- phosphate de pH 4.4. Les concentrations respectivement utilisées de la macromolécule sont 5000 ppm (0,5 %) et 3333 ppm (0,33 %) et 1000 ppm (0,1 %). III-- Résultats Les rhéogrammes no en fonction de y permettent de déterminer les zones newtoniennes d'écoulement. Sur le tableau I ci-après, sont réunis pour les trois différentes concentrations les valeurs de la viscosité spécifique en fonction de la concentra- tion de la solution de polysaccharides. TABLEAU I Concentration C (%) 0,100 0,333 0,500 Viscosité Viscosité rPo/C 2,3 3,87 4,7 spécifique (%)-1 Dans ces conditions, la viscosité intrinsèque du polysaccharide est de 1,75 dl/g. IV - Conclusions Le nouveau polysaccharide,isolé dans les conditions décrites, possède une viscosité intrinsèque de 1,75 dl/g qui est donc supérieure par exemple à celle de l'amylose épaississant exogène pour desserts lactés qui est de 1,54 dl/g dans KCl 0,3 M d'après MITCHELL, 1979. EXEMPLE 3 - Propriété d'un yaourt contenant le poly- saccharide. I - Objectif: Tester le pouvoir épaississant du poly- saccharide.isolé tel que décrit, séché et remis en solution dans un yaourt à boire. II - Matériel et Méthodes Le polysaccharide isolé est mis en solution dans un tampon citrate-phosphate à pH4. On prépare une solution mère à 0,5 %. On ajoute cette solution mère dans le yaourt liquide de façon à atteindre une concentration finale de polysaccharide, ajouté de 0,025 %. A titre de témoin, on ajoute une même quantité de tampon dans du yaourt à boire. La composition du yaourt à boireétait la sui- vante: lait entier: 97 % ferment lactique: 3 %. Les mesures de viscosité sont réalisées au rhéomètre "Low Shear 30" (CONTRAVES). III - Résultats La viscosité du yaourt contenant le poly- saccharide était plus élevée par rapport à celle du yaourt ne contenant pas le polysaccharide. Ainsi, on observe, pour une vitesse de cisaillement de 6 s 1, que la viscosité du yaourt additionné de polysaccha- ride est égale à 285 mPa.s, alors que celle du témoin n'était que de 215 mPa.s (cf. figure 4). Alors même que la quantité de polysaccha- ride ajouté était très faible (0,025 % en poids) ce qui donne une augmentation de viscusité très suffi- sante pour des quantités envisagées dans les yaourts de 0 à 0,5 %. REFERENCES 1 - J.P. Zanetta, W.C. Brekenridge et G. Vincendon, 1972, J. Chromatogr., 69,291-304. 2 - J.Paz-Parente, P.Cardon, Y.Leroy, J.Montreuil, B.Fournet et G.Ricart, 1984, Carbohydr.Res, 141,245- 258. 3 - B.Fournet, G.Strecker, Y.Leroy et J.Montreuil, 1981, Anal.Biochem, 116,845-858. REVENDICATIONS 1. Procédé d'épaississement d'un produit du type lait fermenté, notamment d'un yaourt, caractérisé en ce qu'on ajoute auditproduit un ou des polysaccha- ride(s) produit(s) à partir de bactérie(s) lactique(s) utilisée(s) pour la fermentation du lait, notamment de l'espèce Streptococcus thermophilus et/ou Lactobacillus bulgaricus. 2. Procédé selon la revendication 1, caracté- risé en ce que la ou les souche(s) bactérienne(s) utili- sée(s) ont été sélectionnées en fonction de leur carac- tère épaississant. 3. Procédé selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce que le polysaccharide est produit par la ou les bactérie(s) mise(s) en culture dans les mêmes conditions que les conditions de fabrica- tion du produit de type lait fermente, notamment du yaourt. 4. Procédé selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce que le polysaccharide est produit dans un milieu de culture constitué de lait contenant de 1 à 5 %, de préférence 3 % en poids de fer- ment(s) lactique(s) de l'espèce Streptococcus therMophilus et/ou Lactobacillus bulgaricus, à une température com- prise entre 30 et 45 C, de préférence 40 à 45 C, de préférence encore 43 C pendant une durée de 2 à 5 heures, de préférence 3 à 4 heures 30 minutes, puis le poly- saccharide est extrait du milieu de culture. 5. Procédé selon la revendication 4, caractérisé en ce que le lait est du lait naturel ou du lait reconstitué. 6. Procédé selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce que la quantité de poly- saccharide est comprise entre 0,1 et 0,5 % en poids du produit de type lait fermenté. 7. Procédé selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce que le polysaccharide est produit par une bactérie de l'espèce Streptococcus thermophilus. 8. Produit de.. type lait fermenté, notamment yaourt obtenu par un procédé selon l'une des revendica- tions précédentes. 9. Polysaccharide utile notamment comme agent de texture épaississant pour yaourt dans le procédé selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce qu'il est constitué par -a répétition d'unité tétra- saccharidique composée de galactose, glucose, et de N-acétylgalactosamine dans les rapports molaires 2:1:1 respectivement. 10. Polysaccharide selon la revendication 9, caractérisé en ce qu'il répond à la formule générale 3 Gal S1 - Glc al -3 GalNAc al I I Gal B1 n dans laquelle le glucose est substitué en 3 et en 6. 11. Procédé de production du polysaccharide selon les revendications 9 et 10, caractérisé en ce qu'il est produit à partir de la souche bactérienne Streptococcus thermophilus référencée SODIMA 53 (CNCM 1-733), SODIMA 822 (CNCM 1-735) et SODIMA 413 (CNCM 1-734) mise en culture dans du lait reconstitué stérili- sé avec un inoculum de 3 % en poids de ferment Strepto- coccus thermophilus, la fermentation étant réalisée à 43 C jusqu'à pH 5, soit environ 4 heures.