FR 2623715 A1 19890602 FR 8716420 A 19871126 La présente invention concerne des struc- tures peptidiques et des immunogènes synthétiques comprenant ces structures peptidiques et leurs appli- cations notamment comme vaccin dans un procédé de contrôle de la fertilité chez les humains et les ani- maux. La présente invention concerne en particu- lier des vaccins anti-hCG et des vaccins anti-LH. L'hormone chorionique gonadotrope humaine (hCG) fait partie des hormones glycoprotéiques. Quatre de ces hormones présentent une étroite parentée de structurer ce sont outre l'hCG, l'hormone lutéinisante' ou lutropine (hLH), la follitropine (hFSH) et la thy- rotropine (hTSH) et comprennent chacune des sous-uni- tés a et e associées par des liaisons non covalentes. La sous-unité a est identique dans les quatre hormones et les sous-unités P présentent une importante homo- logie de structure. En particulier la P-hCG et la 3-hLH ont 82% de résidus semblables et la p-hCG dif- 20. fère essentiellement de la P-hLH par les 30 résidus de l'extrémité C-terminale. Cette homologie entre les séquences existe également chez d'autres espèces et des régions haute- ment conservées au cours de l'évolution sont discer- nables non seulement pour la même hormone entre les diverses espèces (LH) mais aussi entre les hormones (CG/LH). On rappelera en outre que les hormones CG n'existent que chez les mamifères les plus évolués et que chez les autres animaux la fonction des hormones CG est remplie par les hormones LH. On sait que l'hCG a un rôle important dans l'établissement et le développement de la grossesse. Bien que le rôle biologique de l'hCG ne soit pas encore totalement connu il semble que son rôle prin- cipal est d'être le signal envoyé par l'ovule fécondé au corps jaune pour que celui-ci maintienne une syn- thèse d'hormones stéroidiennes. Pour avoir une action biologique, l'hCG doit d'abord se fixer sur des récep- teurs présents dans l'ovaire, essentiellement au niveau du corps jaune. On a déjà cherché à inhiber la fonction de l'hCG pour disposer d'une méthode immunologique de contrôle des naissances. A cet effet, on a proposé des vaccins susceptibles d'induire la formation d'anti- corps anti-hCG. On peut citer à ce sujet le brevet FR-74 15, 780 qui décrit un vaccin comprenant comme antigène, un polypeptide modifié chimiquement et notamment l'hCG ou la 0-hCG modifiées chimiquement. On peut noter également le brevet FR-75 23 673 qui décrit un vaccin, comprenant comme antigène un fragment C-terminal de la e-hCG (renfermant de 30 à 38 résidus d'acides aminés). Ce fragment a été choisi pour éviter les réactions croisées avec les hormones voisines et notamment la hLH. On peut trouver un bilan des essais des vaccins anti-hCG dans l'article de Vernon Stevens paru dans Immunology Today (vol.7, 369, 1986). Cet article rend compte en particulier des premiers essais effec- tués en utilisant comme immunogène la séquence 109-145 de la p-hCG couplée à l'anatoxine diphtérique. Mais l'auteur conclut en la nécessité de développer de nou- veaux vaccins anti-hCG. Il s'avère qu'en fait l'immunogénicité de ce vaccin est faible et ne permet pas d'obtenir un taux d'anticorps suffisant. L'Organisation Mondiale de la Santé dans un rapport de 1985 (Special programm of research develop- ment and research training in human reproduction) con- clut également à la nécessité de trouver de nouveaux immunogènes. - Il est à noter par ailleurs que Aushu Vas- hishtha et coll. ont fait état lors du 3rd Interna- tional Congress of Reproduction Immunology, Toronto 1-5 juillet 1986, de l'utilisation comme immunogène d'un peptide conjugué à l'anatoxine tétanique, ce pep- tide comprenant la séquence 21-31 de la 0-hCG et la séquence 104-115 ehCG-Tyr, ces deux séquences étant liées par un pont disulfure. De plus un article de Jean Michel Bidart et' coll. dans Molecular Immunology 24, 339, 1987, fait état de deux régions immuno-dominantes dans la P-hCG, à savoir la région 110-116 et la région 134-139. On a maintenant découvert que l'on obtenait une activité immunogène importante en associant d'une part une région fortement immunogène de la P-hCG, à savoir la région autour du résidu 112 de la P-hCG et notamment la région 106-116 de la P-hCG, et d'autre part une séquence d'acides aminés comprenant un résidu ]ysine, tel que ceux que l'on trouve dans les séquen- ces hautement conservées au cours de l'évolution des sous-unités a, et qu'il était possible ainsi d'obtenir un vaccin anti-hCG. On a également en outre trouvé que cette découverte pouvait être étendue à d'autres hormones glycoprotéiques et notamment aux hormones luteini- santes qui ont un rôle important dans la reproduction de plusieurs espèces animales (chat, chien, etc.). La présente invention a en conséquence pour objet une structure peptique comprenant au moins - la séquence 106-117 d'une 6-CG ou d'une P-LH - une séquence d'au moins 5 acides aminés comprenant au moins un résidu lysine. La présente invention a plus particulière- ment pour objet une structure peptidique comprenant au moins - la séquence 106-116 de la p-hCG - une séquence d'au moins cinq acides aminés comprenant au moins un résidu lysine. La présente invention a en outre pour objet une structure peptidique comprenant au moins - la séquence 106-116 d'une 0-LH - une séquence d'au moins 5 acides aminés comprenant au moins un résidu lysine. La séquence 106-116 de la P-hCG est la sé- quence HPLTCDDPRFQ* La séquence 106-116 de la 0-dLH (hormone luteinisante canine) est la séquence QSLACDRPLLP (voir WO 86/07383). La séquence d'au moins 5 acides aminés com- prenant au moins un résidu lysine peut être notamment une séquence d'une a-CG contenant au moins un résidu lysine, en particulier la séquence 4655 de l'a-hCG, la séquence 45-49 de l'a-hCG, et de préférence la séquence 43-55 de l'a-hCG ou la séquence 41-58 ou 59 de l'a-hCG. Toutefois d'autres séquences sont possibles dans la mesure o elles comprennent au moins un résidu lysine. Il peut s'agir en particulier d'une séquence inverse d'une séquence de l'a-hCG contenant au moins un résidu lysine ou même d'une séquence comprenant, en plus d'un résidu lysine, une suite quelconque d'acides aminés. * Pour la signification des symboles des acides aminés voir en annexe. Dans la structure peptidique selon l'inven- tion, les deux séquences peuvent être combinées sous forme d'un enchaînement linéaire, auquel cas le résidu lysine est avantageusement séparé par au moins 4 aci- des aminés de la séquence 106-116 de la P-CG ou de la P-LH. Dans cet enchainement linéaire les séquences peuvent être combinées dans un ordre quelconque, c'est-à-dire que l'on peut avoir par exemple l'enchai- nement (séquence comprenant la lysine) - (séquence 106-116 0-hCG) ou l'enchaînement (séquence 106-116 P-hCG) - (séquence comprenant la lysine). En outre dans l'enchaînement linéaire les deux séquences peuvent être séparées par une séquence intercalaire ou "spacer" comprenant de 1 à 10 acides aminés. Les deux séquences peuvent être également combinées en étant reliées par une liaison intermolé- culaire ou même intramoléculaire. Ainsi les deux séquences peuvent être reliées par une liaison entre le groupe -COOH d'un des deux restes acide aspartique et le groupe NH2 libre du résidu lysine. Dans le cas d'une liaison intramoléculaire la structure peptidique a alors la forme d'une boucle. Pour renforcer l'immunogénicité, on couple avantageusement, de façon connue, la structure pepti- dique à un porteur. Il'invention a donc également pour objet un immunogène synthétique comprenant la structure pepti- dique selon l'invention couplée à un porteur. Les porteurs peuvent être notamment des por- teurs protéiques et notamment: 1) les anatoxines: tétanique et sa fraction II préparée selon le procédé de Covey et coll., Amer. J. Reprod. Immu- nol. Microbiol. 8,43 (1985). diphtérique, coquelucheuse. 2) les vaccins anti-diarrhéiques (contre ro- tavirus, choléra, Shigelles, E. Coli et salmonelles). 3) les virus de la polyomélite et de la fiè- vre jaune inactivés par la chaleur et le rayonnement. 4) les protéines de membrane du sporozoite de P. Falciparum. Le couplage peut être réalisé à l'aide d'un agent de couplage tel que le glutaraldéhyde ou un carbodilmide. Le glutara.déhyde permet un couplage entre la protéine et le résidu lysine de la séquence conte- nant au moins un résidu lysine. Les carbodiimides permettent un couplage entre la protéine et un résidu acide aspartique de la séquence 106-116 d'une P-CG ou d'une P-LH (par exemple dans la séquence 106-116 de la P-hCG il existe des résidus acide aspartique en positions 111 et 112). Dans le cas de la séquence de la P-hCG on préfère tout particulièrement le couplage entre le porteur et un des acides aminés de cette séquence 106-116, notamment un des résidus acide aspartique. La présente invention a en outre pour objet un vaccin anti-fertilité qui comprend une structure peptidique selon l'invention ou de préférence un im- munogène synthétique selon l'invention et un véhicule pharmaceutiquement acceptable. La présente invention a en particulier pour objet un vaccin anti-hCG qui comprend une structure peptidique comprenant au moins - la séquence 106116 de la 0-hCG - une séquence d'au moins 5 acides aminés 2623 7 15 comprenant au moins un résidu lysine ou un immunogène synthétique comprenant une telle structure peptidique couplée à un porteur et un véhicule pharmaceutiquement acceptable. La présente invention a en outre en particu- lier pour objet un vaccin anti-LH qui comprend une structure peptidique comprenant au moins - la séquence 106-116 de la e-LH - une séquence d'au moins 5 acides aminés comprenant au moins un résidu lysine ou un immunogène synthétique comprenant une telle structure peptidique couplée à un porteur et un- véhicule pharmaceutiquement acceptable. L'immunogène synthétique couplé à son por- teur est de préférence administré après mélange avec des adjuvants d'immunisation. On pourra, par exemple, mélanger l'antigène avec du muramyl dipeptide (MDP; N-acétyl-glucosamine-3yl-acétyl-L-alanyl-D-isogluta- mine) ou l'ester N-butylique (murabutide) dilué dans une solution saline. Le mélange peut être ensuite émulsifié au moyen d'un volume égal de squalène en présence d'arlacel (excipients). Il est aussi possible d'utiliser d'autres adjuvants comme les analogues du MDP, les fractions bactériennes telles les prépara- tions streptococciques (OK 432), ou le Biostim (01K2) ou des préparations de lipolysaccharides modifiés (LPS), de peptidoglycannes (N-Opaca) ou de protéo- glycanes (K-Pneumoniae). Pour les excipients, les émulsions eau-dans-huile sont préférables aux émul- sions huile-dans-eau. On peut également administrer l'immunogène synthétique sous forme de particules biodégradables, telles les microcapsules ou les microsphères, les pré- parations de liposome et les nanoparticules. Dans ce cas, l'immunogène est inclus dans la particule. Ces procédés ont pour but d'augmenter la durée d'action du vaccin. L'administration du vaccin se fait par voie parentérale (pour les vaccins en suspension) et éven- tuellement par voie orale (pour les vaccins adminis- trés sous forme particulaire). Par exemple, l'émulsion peut être injectée par voie intramusculaire dans le muscle tricepts. La quantité d'immunogène utilisée pour chaque injection est variable car elle dépend de la réponse immunitaire de chaque individu. En pra- tique, on utilise des doses de 50-1000 pg par injec- tion soit 1-20 pg/kg de poids corporel. Plusieurs injections sont réalisées jusqu'à obtention d'un titre en anticorps suffisant; chaque rappel est séparé du suivant par une période de 4 à 6 semaines. On contrôle la présence d'anticorps par une méthode radioimmuno- logique cinq jours après le second rappel puis six mois après la vaccination. Les vaccins selon l'invention peuvent en outre contenir d'autres peptides ou d'autres immu- nogènes. L.a présente invention a également pour objet un procédé de contrôle de la fertilité qui consiste à administrer à une femelle un vaccin selon l'invention. La présente invention a plus particulière- ment pour objet un procédé de contrôle des naissances qui consiste à administrer à une femme un vaccin com- prenant une structure peptidique comprenant au moins - la séquence 106116 de la 0-hCG - une séquence d'au moins 5 acides aminés comprenant au moins un résidu lysine ou un immunogène synthétique comprenant une telle structure peptidique couplée à un porteur et un véhicule pharmaceutiquement acceptable. De plus les structures peptidiques compre- nant au moins - la séquence 106-116 de la p-hCG - une séquence d'au moins 5 acides aminés comprenant au moins un résidu lysine peuvent être utilisées pour bloquer les récepteurs de l'hCG et empêcher le développement de la grossesse. La présente invention a en conséquence éga- lement pour objet une composition pour l'interruption de la grossesse comprenant à titre d'ingrédient actif une structure peptidique comprenant au moins - la séquence 106-116 de la p-hCG -- une séquence d'au moins 5 acides aminés comprenant au moins un résidu lysine. Les structures peptidiques selon l'invention peuvent être préparées de manière classique par syn- thèse peptidique en phase liquide ou solide par cou- plages successifs des différents résidus d'acides aminés à incorporer (de l'extrémité N-terminale vers l'extrémité C-terminale en phase liquide, ou de l'ex- trémité C-terminale vers l'extrémité N-terminale en pahse solide) et dont les extrémités N-terminales et les chaines latérales réactives sont préalablement bloquées par des groupements appropriés, largement connus. On peut utiliser différentes méthodes de couplage: 1. Couplage des résidus par un carbodiimide (par ex. N-cyclohexyl-N'- morpholinoéthylcarbodiimide (CMECDI), dicyclohexylcarbodiimide (DCC), N-éthyl-N'- (3-diméthyl-aminopropyl)carbodiimide (EDC)) avec ou sans catalyse (ex. 1hydroxybenzotriazole (HOBT)) ou autre agent couplant (ex. Néthoxycarbonyl-2 éthoxy 1,2-dihydroquinoléine (EEDQ)). 2. Utilisation des acides aminés sous forme d'anhydrides symétriques préformés. 3. Utilisation des acides aminés sous forme d'esters activés (ex. pnitrophénylester, HOBT ester) et couplage par l'intermédiaire de DCC. On préfère toutefois utiliser la technique de synthèse en phase solide, dite technique de Merri- field. Selon cette technique, on utilise une résine polymère poreuse. Sur cette résine sont greffés des groupements fonctionnels, par différentes méthodes. Le premier acide aminé est alors gréffé par sa fonction carboxylique terminale; sa fonction aminée terminale est alors protégée par un groupement protecteur labile sous certaines conditions. Les chaînes latérales sont elles aussi protégées et le resteront jusqu'à la fin de la synthèse. Après déprotection de la fonction aminée terminale de l'acide aminé fixé sur la résine, d'une part, et activation de la fonction carboxylique de l'acide aminé à coupler, d'autre part, la formation de la liaison peptidique est réalisée. Après lavage et élimination des produits de la réaction, une nouvelle déprotection peut être entreprise pour fixer un nouvel acide aminé activé. En dernière étape a lieu le clivage du pep- tide, après avoir, ou en même temps, libéré les chaînes latérales de leurs différents groupements protecteurs. Dans le cas o le groupe protecteur de la fonction aminée est le groupe t-butyloxycarbonyle (t. Boc), il peut être éliminé par traitement de la résine avec de l'acide trifluoroacétique. Les chaînes latérales sont alors protégées par des groupements résistants à l'action de l'acide trifluoroacétique soit: tosyle pour l'arginine et l'histidine, benzyle pour l'acide aspartique, benzyl oxycarbonyle (Z) pour la lysine. Lorsque la synthèse de la totalité de la chaîne a été effectuée, on élimine les groupes pro- tecteurs des différents acides aminés, notamment avec une solution d'acide fluorhydrique faiblement concen- tré dans un mélange paracresol/sulfure de diméthyle et on détache le peptide de la résine par exemple à l'aide d'une forte concentration en acide fluorhydri- que. Les exemples suivants illustrent la présente invention. I - Préparation des structures peptidiques 1) Préparation du peptide (séquence 46-55 de l'a-hCG) - (séquence 106-116 de la O-hCG) (TMLVQKNVT- SHPLTCDDPRFQ). On a réalisé la synthèse sur un synthétiseur automatique Applied Biosystem Model 410A. La fonction amine des acides aminés a été protégée par un groupe t-Boc et la déprotection a été effectuée par l'acide trifluoroacétique. La déprotection finale a été réalisée avec un mélange contenant 6,5 ml de sulfure de diméthyle, lg de paracresol et 1 ml d'HF pour lg de résine peptide pendant 1 h à O'C. Le clivage du peptide a été réalisé à O'C avec 10 ml de HF et 1 g de paracresol pour 1 g de résine-peptide déprotégé. Le peptide ainsi obtenu est ensuite purifié par chromatographie d'exclusion. Il est analysé après hydrolyse acide par chromatographie d'échanges d'une HPLC et détection à la ninhydrine. La séquence est également vérifiée. On a rassemblé dans le tableau I suivant la structure du peptide ainsi préparé ainsi que celles d'autres peptides préparés de manière analogue. TABLEAU I Séquence à résidu Séquence 106-116 Lysine 0-hCG MIMOTOPE 1 avec séquence TMLVQKNVTS HPLTCDDPRFQ 46-55 a-hlCG ______________________________________________________ MIMOTOPE 2 avec séquence STVNKQVLMT HPLTCDDPRFQ a inverse _____ MIMOTOPE 3 avec séquence KTLMLV HPLTCDDPRFQ -49 a-hCG MIMOTOPE 4 avec séquence SKKTMLV HPLTCDDPRFQ 43-49 a-hCG ______________________________________________________ MIMOTOPE 5 avec séquence SKKTMLVQKNVTS HPLTCDDPRFQ 43-55 a-hCG II - Préparation des immunogènes svnthétiques On a couplé la structure peptidique mimotope 1 avec l'anatoxine tétanique en utilisant comme agent couplant d'une part le glutaraldéhyde et d'autre part un dérivé carbodiimide. 1. Couplage au glutaraldéhyde Cet agent couplant a été choisi pour per- mettre une liaison entre le groupement E-NH2 du résidu Lys et les groupements E-NH2 de la protéine porteuse. Le schéma réactionnel est le suivant: R1-NH2+OCH-(CH2)3-CHO+NH2-R2 - R1-N=CH-(CH2)3-CH=N-R2 On a mis en contact le peptide et la pro- téine dans un rapport 50/1 dans le tampon bicarbonate 0,1, NaCl 0,15 M, pH = 8,5. On a ajouté goutte à.goutte le glutaraldé- hyde (dilué au 1/10 dans le même tampon) de façon à avoir un rapport glutaraldéhyde/peptide de 50. On a laissé au contact 2 heures (jaunisse- ment de la solution sans précipitation) à température ambiante. Puis on a effectué une chromatographie d'exclusion sur colonne Séphadex G25. On a obtenu avec la structure peptidique minotope 1 un rapport peptide/protéine porteuse = 24. 2.2. couplage avec un dérivé carbodiimide hydrosoluble Cet agent a été choisi pour permettre une liaison majoritaire entre le P-COOH d'un résidu à groupe acide libre (acide aspartique: 111 ou 112) et les radicaux NH2 de la protéine porteuse. On a utilisé comme carbodiimide le CMECDI. Six milligrammes du peptide précédemment défini sont dissous dans 0,5 ml de tampon phosphate/NaCl. A cette solution, on ajoute 0,2 ml de la solution de CMECDI, p-méthyltoluène sulfonate (10 mg/ml). Après agitation, 5 mg de protéine porteuse (anatoxine tétanique en solution à 6 mg/ml) sont ajoutés au mélange peptide-agent couplant et incubés pendant 2h à température ambiante et sous agitation. Le conjugué peptide-protéine porteuse est ensuite purifié par une chromatographie d'exclusion et la détection du conjugué se fait grâce à un dosage des protéines par le test de Lowry. Le rapport moles de peptide/moles de protéine porteuse est déterminé au moyen d'une analyse d'acides aminés après hydrolyse acide. Dans le cas présent, ce rapport est de 44 moles * de peptide pour une mole de protéine porteuse. III - Immunisation On a effectué une immunisation de 2 lapins (Fauve de Bourgogne) avec chaque immunogène. Protocole d'immunisation 1.1. Préparation de l'immunogène pour une immunisation On a dilué dans 500 pl de tampon phosphate 0.1 M pH=7,4 NaCl 0,15 M, 200 pg d'équivalent peptide (soit pour la structure minotope 1 133 pl de solution protéique peptide/protéine porteuse pour le couplage au glutaraldéhyde et 167 pl pour le couplage au CME-CDI). On a ajouté extemporanément à ces deux solutions protéiques 500 pl d'adjuvant de Freund complet ou incomplet, selon le mode d'injection. On a émulsionné le mélange et on a procédé à l'injection. 1.2. Calendrier d'injection JO On a prélevé un échantillon sanguin (Témoin). Injection intradermique de la solution protéique + adjuvant de Freund complet (volume total 1 ml). à 20 points d'injection (région dorsale). J+10 Injection sous-cutanée de la solution protéique + adjuvant de Freund incomplet (volume total 1 ml). 1 seule injection. J+20 Injection sous-cutanée de la solution protéique + adjuvant de Freund incomplet (volume total 1 ml). J+22 Prélèvement d'un échantillon sanguin et contrôle de la présence et du titre en anticorps. J+30 Rappel identique à J+20. J+33 Prélèvement identique à J+22... 1.3. Résultats de l'immunisation ILa méthode utilisée pour détecter la pré-- sence d'anticorps et leur spécificité est basée sur le dosage radioimmunologique (RIA). Les hormones (hCG, hLH) et leurs sous-unités ghCG, a-hCG) sont marquées par un élément radioactif (NaI125) en utilisant le procédé de Fracker P.J. et Speck, J. C. Biochem. Bio- phys. Res. Commun. 80,849 (1978). On incube l'anti- sérum à tester avec les différentes molécules marquées (traceurs): l'antisérum est dilué dans un tampon approprié et une quantité constante de traceur est ajoutée à chaque - dilution. En présence d'anticorps dans le sérum, un complexe antigène (molécule mar- quée)-anticorps se forme et peut être précipité par le pôlyéthylène glycol. La quantité de radioactivité précipitée est proportionnelle à la quantité d'anti- corps. La spécificité des anticorps est examinée de la façon suivante: à une dilution-constante de l'anti- sérum, on ajoute une quantité constante de hCG-I125 et des quantités croissantes de molécules à tester (hCG,- 0-hCG,a-hCG,hLH...). La spécificité de l'anticorps est donnée par la molécule qui, à la plus faible con- centration, donne un déplacement significatif de la liaison antigène anticorps. Dans le tableau suivant, on donne les résultats obtenus avec les immunsérums prélevés à J22 et provenant de l'immunisation avec des immunogènes constitués par une structure peptidique selon l'invention couplée à l'anatoxine tétanique par le CMECDI: TABLEAU II Pourcentage de fixation de l'antisérum aux molécules marquées (après dilution au 1/10) Antigène testé Mimotope 1 Mimotope 2 hCG 26 12 a-hCG 0 0 P-hCG 4 4 hLH 0 0 Symboles des acides aminés A Ala alanine C Cys cystéine D Asp acide aspartique E Glu acide glutamique F Phe phénylalanine G Gly glycine H His histidine I Ile isoleucine K Lys lysine L Leu leucine M Met méthionine N Asn asparagine P Pro proline Q Gln glutamine R Arg arginine S Ser serine T Thr thréonine V Val valine _W Trp tryptophane Y Tyr tyrosine REVENDICATIONS 1. Structure peptidique comprenant au moins - la séquence 106-116 d'une ^CG ou d'une P-LH - une séquence d'au moins 5 acides aminés comprenant au moins un résidu lysine. 2. Structure peptidique selon la revendi- cation 1, comprenant au moins - la séquence 106-116 de la P-hCQ - une séquence d'au moins 5 acides aminés comprenant au moins un résidu lysine. 3. Structure peptidique selon la revendi- cation 1 comprenant au moins - la séquence 106-116 d'une 0-LH une séquence d'au moins 5 acides aminés comprenant au moins un résidu lysine. 4. Structure peptidique selon la revendica- tion 2, comprenant -- la séquence 106-116 de la e-hCG - une séquence d'au moins 5 acides aminés d'une a-CG comprenant au moins un résidu lysine. 5. Structure peptidique selon la revendica- tion 4, comprenant - la séquence 106-116 de la 1-hCG - la séquence 46-55 de l'a-hCG. 6. Structure peptidique selon la revendica- tion 4, comprenant - la séquence 106-116 de la $-hCG - la séquence 45-49 de l'a-hCG. 7. Structure peptidique selon la revendica- tion 4, comprenant - la séquence 106-116 de la B-hCG - la séquence 43-55 de l'a-hCG. 8. Structure peptidique selon la revendica- tion 1 à 7, dans laquelle les deux séquences sont combinées sous forme d'un enchainement linéaire. 9. Structure peptidique selon la revendica- tion 8, dans laquelle le résidu lysine est séparé par au moins 4 acides aminés de la séquence 106-116 de la 1-CG ou de la P-LH. 10. Immunogène synthétique comprenant une structure peptidique selon l'une quelconque des reven- dications précédentes, couplée à un porteur. 11. Immunogène synthétique selon la revendi- cation 10, dans lequel le porteur est l'anatoxine tétanique. 12. Immunogène synthétique selon la revendi- cation 10 ou la revendication 11, dans lequel le por- teur est couplé avec l'un des acides aminés de la séquence 106-116 de la P-hCG. 13. Immunogène synthétique selon la revendi- cation 12, dans lequel le porteur est couplé avec l'un des résidu acide aspartique de la séquence 106-116 de 20. la.-hCG. 14. Vaccin antifertilité comprenant une structure peptidique selon l'une quelconque des revendications 1 à 9 ou un immunogène synthétique selon l'une quelconque des revendications 10 à 13, et un véhicule pharmaceutiquement acceptable. 15. Vaccin anti-hCG comprenant une structure peptidique selon l'une quelconque des revendications 2 et 4 à 9 ou un immunogène synthétique comprenant une telle structure peptidique couplée à un porteur et un véhicule pharmaceutiquement acceptable. 16. Procédé de contrôle des naissances qui consiste à administrer à une femme un vaccin selon la revendication 15. 17. Vaccin anti-LH comprenant une structure peptidique selon la revendication 3 ou un immunogène comprenant une telle structure peptidique couplée à un porteur et un véhicule pharmaceutiquement acceptable. 18. Procédé de contrôle de la fertilité chez les animaux qui consiste à administrer à un animal un vaccin selon la revendication 17. 19. Composition pour l'interruption de la grossesse qui comprend à titre d'ingrédient actif une structure peptidique selon l'une quelconque des reven- dications 2 et 4 à 9.