FR 2617185 A1 19881230 FR 8708964 A 19870625 -1 - La présente invention concerne un procédé de stabilisation de la membrane de diverses cellules, et, en particulier, des cellules sanguines en vue notamment de les conserver sous une forme protégeant l'essentiel de leurs propriétés biologiques et antigéniques. La conservation des cellules sanguines est un problème très important en hématologie et pour la trans- fusion sanguine. Un grand nombre de solutions et de per- fectionnements ont été apportés à ce problème, mais elles sont encore insuffisanteset la conservation de ces éléments cellulaires est soumise à de nombreuses limi- tations. Il faut considérer essentiellement trois solu- tions différentes: la conservation en milieu liquide, la cryoprotection, la lyophilisation. La conservation en milieu liquide, la plus connue, fait appel à des solutions anticoagulantes, des solutions de conservation et des solutions de régénéra- tion. Les globules rouges peuvent être ainsi conservés entre 30 et 50 jours pour un usage transfusionnel. Par contre, la stabilité des globules tests constituant les panels de dépistage est actuellement limitée à 5-4 se- maines, une conservation prolongée s'accompagnant d'une diminution des activités antigéniques de la membrane. Au-delà, une hêmolyse importante apparaît progressivement. -2- Ln conservation par congélation, est lra mé- thode de choix pour la conservation prolongée des glo- bules rouges et autres cellules. Elle fait appel à des cryoprotecteurs dits internes, car traversant la mem- brane cellulaire comme le glycérol ou le diméthylsulfo- xyde ou externes, généralement des macromolécules (PVP, dextran, etc...). Les températures varient entre celles de l'azote liquide et -25 C. Il est possible de congeler de la même façon des cellules comme, la plupart des globules blancs dans des conditions satisfaisantes. Par contre, la congéla- tion de certaines cellules du type granulocytes n'est pas actuellement possible, car elles sont soumises à des chocs osmotiques importants dans les protocoles de congélation -décongélation. Les techniques de congélation nécessitent des installations fixes importantes qui limitent les possi- bilités d'utilisation de produits congelés, en particu- lier pour les éléments cellulaires réactifs dont le transport est possible mais difficile. - La conservation par lyophilisation: il s'agit d'une méthode idéale théoriquement pour la conservation de cellules, mais qui actuellement n'est pas utilisable malgré diverses tentatives (H.T. Meryman. Drying of Living Mammalian Cells, Anti N.Y. Acad. Sci. (1960), 729-754). Essentiellement, les processus de congélation, deshydratation et réhydratation s'accompagnent d'une sé- rie de phénomènes de dégradation liés d'une part à la formation de cristaux de glace dans la cellule, et d'au- tre part à des chocs osmotiques successifs subis en par- ticulier par la membrane cellulaire lorsque des lyopro- tecteurs internes ou externes sont utilisés. Les érythro- cytes peuvent être stabilisés durablement avant lyophi- lisation, à l'aide de divers réactifs (formol, acide tannique, dialdéhyde, etc...). Ces molécules rigidifient -3- la membrane de sorte que la cellule n'est plus sensible aux chocs osmotiques. Cependant, la riFidification mem- branaire conduit à des particules inertes ayant perdu la plupart de leurs caractères antigéniques propres ainsi que leur mobilité membransire. Ces particules sont utilisées, une fois recouvertes de molécules d'an- tigènes exogènes, dans des réactions dites d'hémaggluti- nation passive ou d'inhibition de l'hémagglutination passive (D.H. BING et al., Exp. Biol. Med. (1967), 124, 1166, 70 et H. ITTO et al. J. Clin. Microbiol. (1976), 4, 188-189). En outre, la réaction d'hémagglutination éry- throcytaire met en jeu d'une part la fixation spécifique d'un anticorps sur un antigène de la membrane, suivie d'une modification des propriétés physicochimiques de la membrane (charge ionique, constante diélectrique), et d'autre part la formation d'un réseau antigène-anticorps directement lié à la mobilité et la déformabilité mem- branaire. La perte de la mobilité membranaire s'accom- pagne donc de la disparition des réactions d'hémagglu- tination liées aux antigènes de groupe sanguin. De ce fait, il n'existe pas actuellement de panels érythrocy- taires, sous forme stabilisée et/ou lyophilisée. Il en est de même pour les panels de lymphocytes destinés à la détection des antigènes d'histocompatibilité. La présente invention concerne un nouveau pro- cédé de stabilisation des membranes cellulaires, en vue notamment de conserver les cellules sous une forme pro- tégeant l'essentiel de leurs antigènes de surface, caractérisé en ce que lesdites membranes sont traitées par un agent stabilisant au moins bifonctionnel suscep- tible de les rigidifier, ledit agent stabilisant pou- vant être disloqué dans des conditions permettant de récupérer les membranes cellulaires ayant conservé 261.718 a -4- l'essentiel de leurs propriétés biologiques et antigé- niques. La stabilisation obtenue par le procédé selon 18 présente invention permet non seulement de protéger les cellules contre une réaction de lyse liée à un choc: osmotique, mais aussi de maintenir l'intégrité des an- tigènes de surface ainsi que des propriétés biologiques desdites cellules. On entend par propriétés biologiques, notamment la mobilité et la déformabilité des membranes cellulaires, ces propriétés étant nécessaires notamment aux réactions d'agglutination. Le procédé selon l'invention est particulière- ment caractérisé en ce que la dislocation de l'agent stabilisant, ou déprotection des membranes cellulaires, permet de retrouver ces dernières intactes. On entend par membranes cellulaires intactes, des membranes ayant conservé l'essentiel de leurs propriétés biologiques et antigéniques. L'agent stabilisant est de préférence selon la présente invention, un réactif bifonctionnel du type F1-X-F2 dans lequel F1 et F2 peuvent être identiques ou différents et sont choisis parmi des groupes suscep- tibles de réagir avec les protéines ou les qlucides de la merbraie et/bu de la cellule, ou avec les fonctions -NH2 ou -SH desdi- tes protéines, et dans lesquels X est une fonction cli- vable ou une liaison entre F1 et F2 clivable. Le carac- tère clivable de la fonction confère au réactif préféré de la présente invention la possibilité d'être disloqué à condition toutefois que ce caractère clivable soit mis en oeuvre dans des conditions permettant de récupérer les membranes cellulaires intactes. F1 et F2 sont, de préférence selon la présente invention choisis dans le groupe comprenant les imido.- esters, les esters de N-hydroxysuccinimide, les haleg- nures de nitroaryl, les carbodiimides, les cyanates, -5- les aldéhydes, les maléimides, les thiophtalimides, les disulfures de pyridyle, les halogènes activés, les nitrènes ou les carbènes précurseurs. Certaines, parmi ces fonctions représentant FI et/ou F2 se fixent de préférence sur une fonction aminoréactive spécifique de protéines membranaires du type R-NH2 o R représente le résidu protéique. Il en est ainsi, en particulier, pour les imidoesters, les esters de Nhydroxysuccinimide, les halogénures de nitroaryl carbodiimides, les cyanates et les aldéhydes. Les réactions spécifiques suivantes permettent la stabilisation selon la présente invention: 1) Imidoester NM/H pH 9-10 NH - C+ R-NH2 - C + CH 30H O-CH3 (ou 0-C2H5) N-R H 2) N-hydroxysuccinimide (NHS) ester 0 0 0 pH 7-8 0 - C - 0 - N + R-NH2 C- ---N-R + HO-N I J H 0 3) Halogénures de nitroaryl "IF pH 10-11 N-R + R-NH2 H No2 2 2 NON NO2 -6- 4) Carbodiimides H /0- -N = C = N- + R C + H - N - C - N- H R--C %so H1 + R' - NH2 R - C - N -R' + -N - C - N- H 0 H (R et R' représentent des résidus protéiques) ) Cyanates H 0 I II 0 = C = NH + R - NH2 >R - N - C - NH2 (carbamylation) 6) Aldéhydes N-R g*o C + NH2 R > -C + H20 H D'autres parmi ces fonctions représentant F1 et/ou F2 se fixent de préférence sur une fonction sulf- hydryl réactive spécifique de protéines membranaires, du type SH-R, o R représente le résidu protéique. Il en est ainsi, en particulier pour les maléimides, les thiophtalimides, les disulfures de pyridyle, et les halogènes activés. Les réactions spécifiques suivantes permettent la réaction selon la présente invention. -7- 1) Maléimides 0 0 H pH 7 -N À1 + SH-R -N Q 0 S-R 2) Thiophtalimides lO 0 o pH 8 -S-N. + SH-R >-S-S-R + H-N "t 3) Disulfure de pyridyl pH - 7 |,+ R - SH - -S-S-R+ -S - SX j HS N 4) Halogènes activés 0 0 I25 pHe 7,2 1i - C - CH2 - Br + R-SH > -C - CH2- S - R + HBr Enfin, certaines, parmi ces fonctions repré- sentant Fi et/ou F2 se fixent de préférence sur des fonctions réactives non spécifiques de protéines. Il en est ainsi pour les nitrènes précurseurs et les carbènes précurseurs. -8-- Les réactions non spécifiques suivantes per- mettent la stabilisation des membranes cellulaires selon la présente invention et ce, grâce à une photoactivation: 1) Nitrènes précurseurs hy R - NI R - N + N2 (activation) R - N + Protéine ->R - N - Protéine i H 2) Carbènes précurseurs O N O H Il II Il I -C - C - CF + Protéine --C - C- CF 1 3 NH-Protéine Outre les fonctions F1 et F2, les réactifs se- lon la présente invention comprennent X qui est de pré- férence choisi parmi les esters, amidine, disulfures et les fonctions --N = N- ou -C - C-. I I OH OH X est une fonction.clivable et ce, selon dif- férents procédés adaptés à sa nature. Ainsi, le clivage peut être obtenu: 1) par réduction: R-S-S-R' (pont disulfure)-+ R - SH ±R' - SH 2) Par action du dithionite de sodium (Na2S206) R - N = N - R'. R - NH2 + R' -NH2 3) Par oxydation périodique: R - C - C - R' > R - CHO + R' - CHO I I OH OH -9- 4) Par ammnonolyse: NH NH Il 11 R - C - MH - R' (amiidine)---* R'-NHt2 + R - C - NH2 ) Par action d'une base: R- NH -CH2 -OCO -CH2 - R' - R - NHCH2OH + R'CH2COOH D'autres fonctions réactives et clivables peuvent être em.ployées dans le procédé selon la présente invention; en particulier, X peut représenter simple- ment une liaison clivable entre F1 et F2; c'est le cas lorsque les fonctions F1 et F2 peuvent, après couplage, - être directement clivables. Dans tous les cas le clivage utile au procédé selon l'invention ne peut être mis en oeuvre que dans des conditions permettant de récupérer des membranes cellulaires ayant conservé l'essentiel de leurs propriétés biologiques et antigéniques. Les réactifs F1-X-F3 ne sont aucunement limi- tés à ceux exemplifiés ci-dessus. En effet, la condition impérative de leur utilisation est qu'ils permettent une rigidification et une déprotection des membranes cellu- laires dans des conditions préservant les propriétés biologiques et antigéniques de ces dernières. Ainsi, les conditions de mise en oeuvre de ces réactifs sont tout aussi importantes que le choix proprement dit des réactifs. On sait, par exemple que des réactions par voie enzymatique sont modérées et permettent de ménager l'intégrité de la cellule. La présente invention s'étend donc aux réac- tifs stabilisants bifonctionnels susceptibles de rigidi- fier les membranes cellulaires par voie enzymatique. C'est ainsi que les résidus amine d'une diamine clivable 2617185: -10- (telle que H2N-CH2-CH2b-BCH2-CH2-NHi2) peuvent être transférés à l'aide de la transglutaminase, sur des résiduF glutamines de protéines cellulaires. La présente invention s'étend aussi aux réac- tifs stabilisants dislocables dans des conditions enzy- matiques, tels que ceux possédant une fonction X qui peut être un polypeptide, un phosphate ou un ester, choisi pour pouvoir être clivé par voie enzymatique. Le procédé selon la présente invention peut être utilisé pour la stabilisation de nombreuses cel- lules, mais on l'appliquera, de préférence aux cellules sanguines et/ou aux cellules d'un organe hématopoiétique, telles que les érythrocytes, les lyrphocytes, les plaquettes ou les gras- nulocytes. Ces cellules, une fois stabilisées, peuvent être utilisées, en milieu liquide, pour constituer des panels de détection pour la transfusion sanguine. Au surplus, la protection induite par la réticulation de La membrane permet d'envisager une conservation par congS- lation ou lyophilisation en mettant les cellules, de façon provisoire, à l'abri d'un choc osmotique. L'avantage surprenant, obtenu grâce au procdce selon la présente invention est le blocage réversible de la réactivité antigénique des cellules, notamment des globules rouges, traitées avec le réactif F1-X-F2 mentionné ci-dessus. C'est pourquoi, les cellules ainsi traitées. peuvent être conservées, congelées et même lyophilisées tout en gardant intactes leurs propriétés antigéniques.. Le procédé selon la présente invention peut également s'appliquer à des cellules à usage thérapeu- tique potentiel; il suffit pour ce faire, d'utiliser des réactifs F1-X-F2 biocompatibles. On pourra recourir, de préférence, dans ce cas, à des réactifs autorisant une rigidification ou un clivage par voie enzymatique (protéases, estérases, phosphatases plasmatiques) afir -11- d'obtenir des cellules déprotégées, biologiquement in- tègres et compatibles. La présente invention s'étend aux diverses utilisations des cellules traitées par le procéde tel que décrit ci-dessus, et, notamment à la préparation de réactifs è l'aide de ces cellules. La présente invention sera mieux comprise à la lecture de l'exemziple suivant, illustré par une fi- gure unique relatif à la lyophilisation des globules rouges. L'exemple ci-après décrit en effet, en détail les résultats obtenus en faisant agir sur les érythro- cytes le diméthyl-3, 3'-dithiobis propionimidate (DTBP) qui est l'un des réactifs les plus représentatifs des familles décrites ci-dessus. Le DTBP répond à la formule suivante: HN. N C- CH2 - CH2 - S - $ - CH2 - CH2-C H3Ca OCH5 Et la réaction de rigidification s'effectue sur les fonctions R1-IH2 et R2-NH2 spécifiques des pro- téines érythrocytaires (R1 et R2 représentent les rési- dus protéiques) de la façon suivante: DTBP + R1NH2 + R2IH2 |pH_9 HN 2 NH CH2 CH2 - s -- CH2H- S-C H 2 - C 3 NHR1 NHR2 La figure unique représente la fragilité osmotique des globules rouges. Sur cette figure: -12- , représente le témoin globules rouges non traités A représente les globules rouges traités au DTBP (8mEi), -5 représente les globules rouges traités au DTBP-réduits et alkylés (mercapto-éthanol, iodoacétamide 12,8 mM). EXEMPLE Stabilisation de globules rouges d'origine humaine par le diméthyl 5,3' dithiobispropionimidate (DTBP), réactif dislocable: A - Les réactifs et solutions 1) Globules rouges Fournis par le Centre de Transfusion Sanguine (CTS) de Tours, recueillis sur CPD ou CPD-SAG mannitol (concentrés globulaires en général). 2) Les réactifs - Le DTBP Fournisseur: Mallet SA, Réf. SIGIMA D 2388 (PL: 309,8) - Le 2-mercapto-éthanol Prolabo - L'Iodoacétamide Fluka - Les sérums test CNTS d'Orsay 5) Les solutions - NaCl 9 /, o en eau distillée, 300 mosm/kg d'eau - Tampon Tris-HC1 0,2 M; pH 9,2; réajuster à 300 mosm/kg avec NaCI Tampon phosphate 0,01 M; pH 7,1; réajuster à 300 mosm/kg avec NaCl (P.B.S.). B - Réaction de rigidification 1) Préparation des globules rouges Le concentré de globules rouges est décanté puis lavé 3 fois en NaCl 9 O/%o pour être finalement resuspendu en NaCl 9 O/co à un hématocrite de 85 % 15- (+ 2 %). 2) Rig idification - Pour I ml de culot de globules rouges traités à 6,5 mM de DTBP. Dans un tube pouvant contenir 10 ml, on ajoute 8 ml de Tampon Tris HCl (cf solution) préalablement ra- mené à température ambiante aux 18,1 mg de DTBP (pesé auparavant directement dans le tube). L'ensemble est agité (au vortex) quelques secondes (dissolution immé- diate). Aux 8 ml, on ajoute immédiatement I ml du cu- lot à traiter (durée de vie du réactif très brève) (le culot est ramené également à température ambiante). Le tube est incubé pendant 50 minutes à tempé- rature ambiante sous agitation lente (par retournement). Au bout de 30 minutes, le tube est centrifugé min à +4 C à 2400 rpm, décanté puis le culot est lavé 2 fois en PBS (par centrifugation et décantation succes- sives, 10 min à 2400 rpm). Le culot étant "pris en masse" à la fin de chaque centrifugation il est nécessaire de le remettre en suspension à l'aide d'une pipette pasteur. Une légère hémolyse apparaît en général après le premier lavage en PBS. C - Réaction de réduction-alkylation 1) Préparation du culot traité au DTBP Au dernier lavage, on obtient I ml de culot à -- 80 % Hc. A ces I ml, on ajoute 1 ml de PBS (le tout est homogénéisé à l'aide d'une pipette pasteur et d'un vor- tex) (Hc - 40 %). 2) Préparation des solutions de réduction et d'alky- lation Solution de réduction On prépare une solution à 5 % (v/v) en mercaptoéthanol -14- drrns du PBS (1 ml de mercaptoéthanol pur pour 19 ml de PBu). Solution d'alkylation On prépare une solution à 8,74 % (en p/v) en jodacétami- de dans du PBS (87,4 mg de iodoacétamide pour I ml de PBS). 3) Réductionalkylation d'un culot de globules rouges au DTBP A I ml de PBS on ajoute: - 401l de mercaptoéthanol à 5 % puis Agitation vortex - 50Il de iodoacétamiie à 8,74 % puis Agitation vortex Puis immédiatement, on ajoute I ml de culot traité au DTBP (ramené à 40 %50 d'Hc avec PBS) (concentration fi- nale en mercaptoéthanol: 12,8 mEi ou 0,1 % - Concentra- tion finale en iodoacétamide: 12,8 mMI). L'ensemble est incubé 10 min à température ambiante sous agitation par retournement du tube. Au bout de 10 min, le tube contenant 2 ml est complété à 5 ml avec NaCl 9 I /o puis centrifugé à 2 400 rpm pendant 10 min. Le culot obtenu est ensuite lavé (1 à 2 fois) en NaCl 9 0/. * Les différentes étapes de ce procédé sont ré- sumées dans le schéma type suivant: -15- Sang total ou culot prélevé sur CPD ou SAG Mannitol 1 5 lavages en NaCl 9 %/o Culot G.R. à 85% d'Hc 8 volumes de tampon Tris HC1 0,2 M, (/ 300 mosM/kg) + DTPB VS (en poudre) pour 1 volume de culot Incubation 30 mn à température am- biante sous agi- tation douce GR stabilisés (DTPB) finale de 6,5 à 8 mM 2 lavages en PBS (pH 7,1, 300 mosM/kg- CONGELATO 1' 0,01 M GR stabilisés lavés (phase A) CONGELATION CONGELATION REDUCTION (en N2 liquide) (en N2 liquide) I'' DECONGELATION ALKYLATION LYOPHILISATION REDUCT'ON AIKYLATION G.R. lyophilisés G.R. réduits G.R. réduits IV; phase II) (phase I) REHYDRATATION REDUCTION ALKYLATION G.R. réduits (phase III) -lb- Principaux résultats 1) Fragilité osmotique des globules rouges ainsi traités Les courbes de fragilité osmotique obtenues par détermination du pourcentage d'hémolyse pour une gamme de pressions osmotiques donnée (cf figure), nous montrent que: - Lorsque le globule rouge est uniquement traité par action du DTBP, (phase A sur le schéma) sa résistance à la lyse en milieu hypotonique est très accrue (peu ou pas de lyse en eau distillée). A ce stade, les glo- bules rouges peuvent être congelés en azote liquide puis décongelés en l'absence de cryoprotecteurs (peu d'hémolyse). Il en est de même pour la lyophilisation. - Lorsque le globule rouge est "réduit-alkylé" (phase I sur le schéma) après traitement au DTBP,'la courbe de fragilité osmotique reprend une allure pratiquement normale par rapport au témoin avec un déplacement d'environ 50 mosM/kg à droite pour le 50 % d'hémolyse. 2) Réactivité antigénique des globules rouges ainsi traités Lorsque le globule rouge est traité au DTBP (phase A) à une concentration finale en DTBP > 5 mM, les antigènes A, B..et du groupe rhésus (D, C, c, E, e) ont pratiquement totalement perdu leur réactivité (très faible pour le A et B). Lorsque le globule rouge est "réduit-alkylé" (phase I) après traitement au DTBP et conservé en milieu liquide, les résultats obtenus pour les antigènes testés sont les suivants (tableau I) -17- TABLEAU I Antig-ne Globule Globule rouge Technique de Sp4cifi- rouge traité au DTBP groupage cité témoin réduit-alkylé A..4.++ sur plaque d'opaline B +++.++ sur plaque d'opaline D +++ +++ sur plaque d'opaline C ++ ++ sur plaque d'opaline C d+ ++ sur plaque d'opaline E ++ ++ sur plaque d'opaline e ++ + d sur plaque d'opaline Fya + ++ Coombs BFI Fyb + ++ Coombs BFI JKa ++ ++ Coombs BFI JKb ++ ++ CoorMbs BFI E +++ +++ Milieu salin N.. +++ +++ Milieu salin- Pl...... Coombs BFI S..+++ + Coombs BFI s +++ +++ Coombs BFI a ++ ++ Coombs indirect ( Les croix représentent l'intensité de la réaction d'agglutination). Les globules rouges témoins et traités au DTBP puis "réduit-alkylés" ont une réaction négative en présence de sérum AB en milieu salin, en Coombs nor- mal, Coombs BF et en papaine, ce qui traduit une ab- sence d'antigènes de polyagglutinabilité. -18- 3) Cryoprotection et lyorhilisation Les 4:lobules roue:s traités au DTB}' sont très résistants et peuvent être congelés directement en eau distillée et décongelés dans les mêmes conditions (phase II sur le schéma) . Le rendement de récupération après déconGélation est pratiquement de 100 %'. Cependant, les conditions brutales de pression osmotique peuvent induire une destruction antigénique partielle ainsi que modifier les conditions de réduction alkylation. Pour atténuer ces effets, il est souhaitable d'utiliser des cryoprotecteurs internes et/ou externes, en vue de récu- pérer la réactivité antigénique totale après réduction et alkylation. Le rendement de la récupération est pratique- ment de 100 % (peu ou pas de lyse). La réactivité anti- génique pour les antigènes A et B est récupérée après ré- duction et alkylation. En ce qui concerne la lyophilisation, (phase III sur le schéma), la situation est identique:les globules stabilisés peuvent être lyophilisés directement. La recherche d'une récupération optimale des cellules et de leur réactivité antigénique met en jeu l'usage de lyoprotecteurs, de solutions de réhydratation, de cinétique de déprotection pour éviter un choc osmotique excessif produisant des dommages irréversibles. La rigi- dification temporaire de la membrane permet de s'affran- chir de la brutalité d'une réhydratation directe condui- sant à une dégradation immédiate et irréversible de la cellule. Les optimisations correspondantes sont en cours. -19- - REVENDICATIONS - I - Procédé de stabilisation des membranes cellulaires, en vue notamment de conserver les cellules sous une forme protégeant l'essentiel de leurs antigènes de surface, caractérisé en ce que lesdites membranes sont traitées par un agent stabilisant au moins bifonc- tionnel susceptible de les rigidifier, ledit agent sta- bilisant pouvant être disloqué dans des conditions per- mettant de récupérer les membranes cellulaires ayant conservé l'essentiel de leurs propriétés biologiques et antigéniques. 2 - Procédé selon la revendication 1 caracté- risé en ce que l'agent stabilisant est un réactif du type F1-X-F2 dans lequel F1 et F2 peuvent être iden- tiques ou différents et sont choisis parmi des groupes susceptibles de réagir avec les protéines ou les glucides desdites membranes et/ou desdites cellules, ou avec les fonc- tions -NH2 ou -SH desdites protéines, et dans lequel X est une fonction clivable ou une liaison entre et F2 clivable. 3 - Procédé selon la revendication 2, carac- térisé en ce que F1 et F2 sont choisis dans le groupe comprenant les imidoesters, les esters de N-hydroxy- succinimide, les halogénures de nitroaryl, les carbo- diimides, les cyanates, les aldéhydes, les maléimides, les thiophtalimides, les disulfures de pyridyle, les halogènes activés, les nitrènes ou les carbènes pré- curseurs. 4 - Procédé selon la revendication 2, carac- térisé en ce que X est une fonction choisie dans le groupe comprenant les phosphates, polypeptides, esters, amidine, disulfures et les fonctions -N = N- ou -i - i-' OH OH - Procédé selon l'une quelconque des revendications I à 4, caractérisé en ce que les cellules -20- sont des cellules issues du sang et/ou d'un organe hé- matopoiétique. 6 - Procédé selon la revendication 5, carac- térisé en ce que les cellules sont des érythrocytes. 7 - Procédé selon la revendication 5, carac- térisé en ce que les cellules sont des lymphocytes. 8 - Procédé selon la revendication 5, carac- térisé en ce que les cellules sont des granulocytes. 9 - Procédé selon la revendication 5, carac- térisé en ce que les cellules sont des plaquettes. l'O1 - Procédé selon l'une quelconque des re- vendications I à 9, caractérisé en ce que les cellules sont des cellules ayant un potentiel thérapeutique et/ou antigénique. 11 - Application du procéd.é selon l'une quel- conque des revendications I à 10à la congélation des cellules. 12 - Application du procédé selon l'une quel- conque des revendications 1 à 11 à la lyophilisation des cellules.. 13 - Application du procédé selon l'une quel- conque des revendications I à 12 à la conservation des cellules.