FR 2607518 A1 19880603 FR 8616787 A 19861201 La présente invention concerne plus particulièrement un vaccin destiné à la prévention du SIDA. Le syndrome d'immunodéficience acquise (SIDA) est une affection virale qui présente maintenant une importance majeure en Amérique du Nord, en Europe et en Afrique centra- le. Les estimations récentes suggèrent qu'environ un million d'Américains peuvent avoir été exposés au virus du SIDA. Les individus affectés présentent une immunodépression sévère et la maladie est, en général, fatale. La transmission de la maladie s'effectue le plus souvent par contact sexuel, bien que les personnes utilisant des stupéfiants par voie intraveineuse représentent également un groupe à haut risque; d'autre part, un grand nombre d'in- dividus ont été infectés par ce virus après avoir reçu du sang ou des produits sanguins contaminés. L'agent causal de cette affection est un rétrovirus. De nombreuses affections animales ont été attribuées aux rétrovirus, mais c'est seulement récemment que des rétrovirus humains ont pu être décrits. Alors que des rétrovirus des cellules T humaines (HTLV: human T leukemia virus) de types I et II ont été identifiés comme étant l'agent causal de certaines leucémies des cellules T chez les adultes, le rétrovirus associé à des lymphadénopathies (LAV), également appelé virus HTLV III ou AIDS-related virus (ARV) et baptisé récemment HIV1(pour Human Immunodeficiency Virus) est généralement reconnu comme l'a- gent responsable du SIDA. Le génome de plusieurs isolats de HIV a été caracté- risé de façon très complète (Wain-Hobson et al., 1985; Ratner et al., 1985; Muesing et al., 1985; Sanchez-Pescador et al., 1985) et les similitudes de l'organisation génétique avec le virus VISNA, prototype des lentiviridae, suggèrent une parenté avec ce groupe de rétrovirus. Les lentiviridae sont les agents de maladies persis- tentes à progression lente qui présentent une période d'incu- bation prolongée. De plus, comme le virus VISNA, le HIV mon- tre un certain tropisme pour les tissus nerveux du cerveau. En plus des trois gènes communément retrouvés chez tous les rétrovirus et désignés gag, pol et env, le génome du virus HIV possède au moins 4 gènes supplémentaires: Q ou sor, TAT, ART, et F ou 3'orf (Rosen et al., 1986; Fisher et al., 1986). Le gène gag code pour les protéines de structure du virion. Le messager issu de sa transcription est traduit sous la forme d'une protéine de 55.000 daltons (p55) et ce précur- seur est alors maturé sous l'action d'une protéase spécifique codée par le gène pol. Le premier clivage endoprotéolytique génère une protéine de 40000 daltons (p40) et de 15000 dal- tons (p15) puis le deuxième clivage génère une protéine de 18000 daltons (p18) et de 25000 daltons (p25); l'ordre des cadres de lecture étant H2NplS8-p25-p15-COOH. L'extrémité NH2-terminale de la p55 confondue avec celle de la pl8 est acylée par l'acide myristique ce qui corrobore l'hypothèse selon laquelle la p18 servirait de lien entre l'acide ribonu- cléique génomique et la membrane dans la particule virale. La p25 est le constituant majeur de la capside du virion. Le caractère fortement basique de la p15 suggère sa liaison intime avec les acides ribonucléiques viraux (Wain-Hobson et al., 1985). Il est aisé de détecter des anticorps dirigés contre les protéines codées par le gène gag dans les sérums des malades atteints de SIDA, à l'exception de la protéine p15. Cette réponse immunitaire révèle le caractère fortement immu- nogène de ces différentes protéines chez les sujets infectés par le virus HIV. On remarque également que lorsqu'un indivi- du est séropositif, la majorité de ses anticorps est dirigée contre la p25 et il faut attendre la phase aiguë de la mala- die pour observer un effondrement du titre des anticorps anti-p25. Cette observation établissant un parallèle entre la réponse immunitaire et l'évolution de la pathologie désigne la p25 comme une des cibles contre lesquelles il faut dresser une réponse immunitaire pour obtenir une protection contre l'issue fatale de la maladie. Plusieurs publications soulignent l'importance des protéines de structure des virions dans l'induction des méca- nismes d'immunité de type cellulaire. Parmi ces travaux il faut citer le cas du virus Influenza pour lequel une réaction CTL (lymphocytes T cytotoxiques) dirigée contre la nucléopro- téine (composante majeure de la capside du virion) d'un sous- type viral est capable de protéger également contre un autre sous-type alors qu'il n'existe pas de réaction immunitaire croisée entre sous-types pour les anticorps induits par les glycoprotéines de surface (hémagglutinine et neuraminidase). La structure primaire de ces glycoprotéines présente des zones variables dont les séquences peptidiques sont spécifi- ques à chaque sous-type. C'est cette divergence qui est res- ponsable de l'absence de réaction immunitaire croisée. Une telle divergence existe aussi entre les différents isolats du HIV, elle est maximale pour les séquences de la glycoprotéine ENV (jusqu'à 35 %) mais minimale (3 à 5 %) pour celles du gène gag (Starcick et al., 1986). C'est pourquoi l'utilisati- on de la protéine p25 codée par le gène gag pour stimuler une réponse immunitaire contre l'infection par le HIV est la stratégie adoptée dans la présente invention. La présente invention concerne l'expression de la protéine p25 en utilisant le virus de la vaccine comme vecteur. Des développements techniques récents ont autorisé la manipula- tion du génome du virus de la vaccine et son utilisation comme vecteur d'expression de gènes clones. Des virus recombinants vivants ont permis d'exprimer des antigènes étrangers et même d'obtenir des immunisations contre différentes maladies virales (Herpes, Influenza, Hépatite B etc) ou parasitaires (Malaria) (M. Mackett et al., 1986; B. Moss; 1985). L'expression d'une séquence codant pour une protéine étrangère par le virus de la vaccine (W) implique nécessai- rement deux étapes: 1) la séquence codante doit être alignée avec un promoteur de VV et être insérée dans un segment non essentiel du génome de VV, clone dans un plasmide bactérien approprié; 2) les séquences d'ADN de VV situées de part et d'autre de la séquence codante doivent permettre des recombinaisons homolo- gues entre le plasmide et le génome viral; une double recom- binaison réciproque conduit à un transfert de l'insert d'ADN du plasmide dans le génome viral dans lequel il est propagé et exprimé (Panicali et Paoletti, 1982; Mackett et al., 1982; Smith et al., 1983; Panicali et al., 1983). Bien entendu, l'utilisation de ce type de vecteur implique souvent une délétion partielle du génome du virus vecteur. La présente invention concerne plus particulièrement un vecteur viral caractérisé en ce qu'il comporte au moins: - une partie du génome d'un virus vecteur, - un gène codant pour la protéine p25 du virus HIV, responsa- ble du SIDA, - ainsi que les éléments assurant l'expression de cette pro- téine dans des cellules. L'invention concerne également les ADN recombinants correpondant auxdits vecteurs viraux. Par virus responsable du SIDA, on entend notamment désigner le virus HIV de même que d'éventuels mutants ponctuels ou des délétions partielles de ces virus, ainsi que les virus appa- rentés. Les vecteurs viraux, dans la partie correspondant au génome du virus vecteur (distinct du virus responsable du SIDA), peuvent être constitués à partir du génome d'un virus d'origine quelconque. Toutefois, on préférera utiliser une partie du génome d'un poxvirus et plus particulièrement une partie du génome de la vaccine. Les conditions nécessaires pour l'expression d'une protéine hétérologue dans le virus de la vaccine ont été rappelées précédemment. De façon générale, le gène en cause, par exemple le gène p25, devra, pour pouvoir être exprimé, être sous la dépendance d'un promoteur d'un gène de la vaccine; ce promo- teur sera en général le promoteur de la protéine 7,5K. En outre, la séquence codante devra être clonée dans un gène non essentiel de la vaccine qui pourra éventuellement servir de gène marqueur. Dans la plupart des cas, il s'agira du gène TK. La présente invention concerne tout d'abord l'utili- sation de vecteurs viraux pour l'obtention de la protéine codée par le gène p25 du virus HIV dans des cultures cellu- laires. Il s'agit donc dans un premier temps de cellules de mammifères qui ont été infectées par un vecteur viral selon l'invention ou bien qui peuvent contenir l'ADN recombinant corespondant; parmi ces cellules, il faut citer plus parti- culièrement les cellules diploïdes humaines, les cellules Vero ainsi que des cultures primaires. Bien entendu, il est possible de prévoir d'autres types de cellules. Les protéines ainsi obtenues peuvent être utilisées après purification pour la réalisation de vaccins. Il est également possible de prévoir l'utilisation directe des vecteurs viraux selon l'invention afin d'effectu- er une vaccination, la protéine p25 étant alors produite in situ et in vivo. Enfin, la présente invention concerne également les anticorps dressés contre les protéines p25, obtenus par in- fection d'un organisme vivant avec un vecteur viral tel que décrit précédemment et récupération des anticorps induits après un temps déterminé. Les techniques mises en oeuvre pour l'obtention de la protéine p25, les cultures cellulaires et les techniques de vaccination sont identiques à celles qui sont pratiquées actuellement avec les vaccins connus et ne seront pas décri- tes en détail. Les exemples ci-après permettront de mettre en évidence d'autres caractéristiques et avantages de la présente invention. Les figures ci-annexées sont les suivantes: Figure I: construction du plasmide MI3TG1 124, Figure 2: construction du plasmide M13TG1125, les abréviations utilisées sont les suivantes: p15 cadre de lecture de la protéine p15 du HIV, pi8 cadre de lecture de la protéine p18 du HIV, - 2607518 p25 cadre de lecture de la protéine p25 du HIV, L J séquences nucléotidiques provenant du HIV, l cadre de lecture de la protéine p25 du HIV localisation de la mutagénèse dirigée, À fgt. R1 délétion du fragment de restriction EcoRI, E'- mise en évidence des sites de restriction utilisés, H3,RI,R5,BI,P2 enzymes de restriction, respectivement: HindII, EcoRI, EcoRV, BamHI, PvuII, Figure 3: autoradiographie montrant la production de protéine p25 par les virus recombinants (3A et 3B), Figure 4: détection d'anticorps contre p25. Exemple 1 Construction du plasmide M13TGl1124. La protéine p25 dérive d'un précurseur polyprotéique p55; sa séquence correspondante en acide nucléique est donc dépourvue des signaux d'initiation et de terminaison de tra- duction aux extrémités du cadre de lecture. Deux mutagénèses dirigées sont effectuées, l'une pour introduire un ATG en amont, l'autre pour placer un codon "STOP" en aval de la séquence codante. Clonage et mutagénèse de la séquence correspondant à la portion COOH terminale de la p25. Le fragment de restriction HindIII (coordonnée 1258 dans Jain-Hobson et al., 1985) EcoRI (coordonnée 2523) du plasmide pJ19.13 (Wain-Hobson et al. , 1985) a été cloné dans les sites correspondants du vecteur M13TG131 (Kieny et al., 1983) pour former le plasmide M13TG1120. L'arrêt de la traduction à l'extrémité-du cadre de lecture de la- p25 va être provoqué par l'introduction d'un codon "STOP" en phase, au nucléotide de coordonnée 1425. L'oligonucléotide de synthèse TG668 '-GGCTCATGAATTCCTACAAAACTC-3' a été utilisé pour réaliser cette mutagénèse sur le plasmide M13TG1120. Le criblage des clones obtenus après la mutagénèse dirigée, réalisé avec l'oligonucléotide TG668 marqué avec l'isotope 32p, a permis d'isoler le plasmide M13TGl121 (Figure 1). Le petit fragment de restriction EcoRI de ce plasmide a été délété pour créer le plasmide r13TG1122. Clonage et mutagénèse de la séquence correspondant à la portion NH2-terminale de la p25. Le fragment de restriction HindIII (coordonnées 631- 1258 dans;ain-Hobson et al., 1985) du plasmide pJ19.25 a été cloné dans le site HindIII du plasmide t413TG1122 pour former le plasmide M13TG1123. L'initiation de la traduction à l'ex- trémité NH2-terminale du cadre de lecture de la p25 est ré- alisée par l'addition d'un codon initiateur en amont du nucléotide de coordonnée 732. L'oligonucléotide de synthèse TG626 5'CACTATAGGGCC CATGGTGCTGACC-3' utilisé pour cette mutagénèse a été conçu pour obtenir également la mutation des séquences au voisinage de 'ATG initiateur, conformément aux règles de Kozak (Kozak M., 1986). Le criblage des clones obtenus après la mutagénèse dirigée, réalisé avec l'oligonu- cléotide TG626 marqué avec l'isotope 32p a permis d'isoler le plasmide M13TG1124. Celui-ci renferme un cadre de lecture qui code pour une protéine p25 allongée à son extrémité NH2- terminale de deux acides aminés supplémentaires: une méthi- onine suivie d'une glycine. Le reste de la séquence protéique est rigoureusement identique à celle de la p25 du virus HIV. Exemple 2 Construction du plasmide M13TG1125. Ce plasmide ne diffère du plasmide M13TG1123 que par la substitution du deuxième codon glycine par le codon alanine à l'extrémité NH2-terminale de la protéine. Les éta- pes de clonage et de mutagénèse de la partie COOH terminale ainsi que le clonage de la partie NH2-terminale sont identi- ques à celles décrites dans l'exemple 1. 10. Mutagénèse de la partie NH2-terminale. L'oligonucléotide de synthèse TG694 'GCACTATAGGTGCCATGGTGCTGACCTGGATC TGTGTCC-3' a été utilisé pour introduire un codon méthionine suivi d'un codon alanine en amont du premier codon proline de la p25 du virus HIV. De plus un site pour l'enzyme de restriction BamHI a été placé 17 nucléotides en amont de i'ATG, lors de la mutagénèse du plasmide tM13TG1123. Le criblage des clones par l'oligonu- cléotide TG694 marqué avec l'isotope radioactif 32p a permis d'isoler le plasmide M13TG1125 (voir figure 2). Exemple 3 Construction du plasmide pTG2101 Pour obtenir l'expression de la p25 par le vecteur vaccine, la séquence codante de cette protéine a été placée sous le contrôle du promoteur du gène 7,5K du virus de la vaccine. Le plasmide M13TG1124 a été coupé par les enzymes de restriction PvuII et EcoRI et le fragment d'ADN codant pour la p25 a été introduit dans le plasmide pTG186POLY (brevet français 86.05043) successivement traité par l'enzyme BamHI, la DNA polymérase et l'enzyme EcoRI. Les clones obtenus, après l'action de la T4 DNA ligase et transfection dans des bactéries, sont analysés par cartographie de restriction; le plasmide pTG2101 a été sélectionné. 1 0 Exemple 4 Construction du plasmide pTG2102. La séquence p25 du plasmide M13TG1125 a également été placée sous le contrôle du promoteur du gène 7,5K du virus de la vaccine. Les plasmides M13TGl125 et pTG186POLY ont été coupés par les enzymes de restriction BamHI et EcoRI. Les produits de ces réactions ont été mélangés, soumis à l'action de la T4 DNA ligase et transfectés dans des bactéries. Les clones obtenus ont été analysés par cartographie de restriction et le plasmide pTG2102 a été retenu. Exemple 5 Introduction du gène p25 dans le génome du virus de la vaccine et isolement de virus recombinés. La stratégie décrite par Smith et al. (1983) repose sur la recombinaison génétique qui se réalise in vivo entre les séquences homologues des génomes du virus de la vaccine, dans la cellule infectée. Ce phénomène permet le transfert d'un fragment d'ADN cloné dans un plasmide vers le génome viral. L'utilisation du gène de la thymidine kinase (TIK) du virus de la vaccine permet non seulement de provoquer l'intégration de l'ADN étranger dans le locus de ce gène mais aussi de disposer d'un marqueur phénotypique pour la sélection des virus recombinants qui sont devenus TK-. Les virus TK- peuvent être sélectionnés par étale- ment sur une lignée cellulaire TK-, en présence de 5-bromo- déoxyuridine (5BUDR) (Mackett et al., 1982). Un virus TK- peut y répliquer son ADN normalement et former des plages visibles. Le virus de la vaccine se propage dans le cytoplasme des cellules infectées plutôt que dans leur noyau. C'est 1 1 pourquoi il n'est pas possible de tirer avantage de la machi- nerie de réplication et de transcription de l'ADN de l'hôte et il est nécessaire que le virion possède les composants pour l'expression de son génome. L'ADN de VVW purifié est non infectieux. Afin de générer les recombinants, il est nécessaire d'effectuer simultanément l'infection cellulaire avec du virion WVV et une transfection avec le segment d'ADN étranger cloné qui porte une zone d'homologie avec l'ADN de la vacci- ne. Toutefois, la génération des recombinants est limitée à la petite proportion des cellules qui sont compétentes pour la transfection par l'ADN. L'utilisation comme virus infectieux vivant d'un mutant thermosensible (ts) de la vaccine qui est incapable de se propager à une température non permissive de 39,5 C (Drillien et Spehner, 1983) diminue le bruit de fond consti- tué par les virus non-recombinants. Lorsque les cellules sont infectées par un mutant ts dans des conditions non permissi- ves et transfectées avec l'ADN d'un virus de type sauvage, la multiplication virale interviendra seulement dans les cellu- les qui sont compétentes pour la transfection et dans les- quelles une recombinaison entre l'ADN viral sauvage et le génome du virus ts aura eu lieu; aucun virus ne se multipli- era dans les autres cellules, en dépit du fait qu'elles ont été infectées. Si un plasmide recombinant contenant un frag- ment de l'ADN de vaccine tel que le pTG2101 ou le pTG2102 est inclus dans le mélange de transfection, à la concentration appropriée, avec l'ADN du type sauvage, il est également pos- sible d'obtenir qu'il participe à la recombinaison homologue avec l'ADN de la vaccine, dans les cellules compétentes. Des monocouches de cellules primaires de fibroblas- tes d'embryons de poulets (CEF) sont infectées à 33 C avec VV-Copenhague ts7 (0,1 ufp/cellule) et transfectées avec un coprécipité au phosphate de calcium de i'ADN du virus de type sauvage VV-Copenhague (50 ng/106 cellules) et le plasmide recombinant (50 ng/106 cellules). Après incubation pendant 2 heures à une température de 33 C, les cellules sont incubées pendant 48 heures à 39,5C, température qui ne permet pas le développement du virus ts. Des dilutions de virus ts+ sont utilisées pour infecter des monocouches de cellules humaines 143B-TK- à 37 C en présence de 5BUDR (150 gg/ml). Différentes plages de virus TK- sont obtenues à partir de ces cellules qui ont reçu le plasmide recombinant, tandis que les cultures contrôles sans plasmide ne montrent pas de plages visibles. Les virus TK- sont ensuite sous-clonés par une deuxième sélection en pré- sence de 5BUDR. Une double recombinaison réciproque entre le plasmi- de pTG2101 ou pTG2102 et le génome de VV aboutit à l'échange du gène TK portant l'insert avec le gène TK du virus, les recombinants devenant ainsi TK-. Les ADN purifiés à partir des différents virus re- combinants TK- sont digérés par aindIII et soumis à une élec- trophorèse sur gel d'agarose. Les fragments d'ADN sont trans- férés sur un filtre de nitrocellulose selon la technique décrite par Southern (1975). Le filtre est ensuite incubé avec le plasmide pTG2101 ou pTG2102 préalablement marqué avec l'isotope 32p. Le filtre est lavé et autoradiographié. Après le développement, on observe sur le film la présence de frag- ments dont la taille atteste du transfert du gène codant pour la p25 dans le génome de la vaccine. Pour chacun des plasmides pTG2101 et pTG2102, un virus recombinant a été sélectionné et respectivement dénomé VV.TG.25MG et VV.TG.25MA. Exemple 6 Synthèse de la protéine p25 dans les cellules infectées par les virus de la vaccine recombi- nants. La procédure décrite ci-dessous s'applique indiffé- remment aux virus recombinants VV.TG.25MA ou VV.TG.25MG. Une monocouche semi-confluente de cellules BHK21 est infectée à une multiplicité de 0,2 ufp/cellule. L'infection est réalisée avec le virus vaccine recombinant dans un milieu de culture G-MEM supplémenté avec 5 % de sérum de veau foe- tal. Après une incubation à 37 C pendant 18 heures, le milieu de culture est substitué par un milieu renfermant de la mé- thionine marquée par l'isotope radioactif 3bS. En règle géné- rale on ajoute 10 gl de 35S méthionine (5 mCi/300 Sl) à 1 ml de milieu de culture pour obtenir un marquage efficace des protéines. Après une nouvelle incubation à 37 C le surnageant de culture est séparé des cellules par centrifugation. Les deux fractions sont incubées séparément avec du sérum d'un malade atteint de SIDA, puis avec de la protéine A sépharose. La fraction des immunoglobulines adsorbée sur la protéine A sépharose est alors séparée par centrifugationvet ce matériel est soumis à une électrophorèse en gel de polyacrylamide-SDS suivi d'une autoradiographie. La figure 3 présente les résultats obtenus avec les virus recombinants VV. TG.25MG et VV.TG.25MA. Sur la figure 3A qui représente les résultats obtenus avec les culots cellu- laires les pistes 1, 2, 3, 4, 5 correspondent au virus recom- binant VV.TG.25MA (2,4, 6, 10 et 24 heures après le marquage à la 35S Met) ; les pistes 6,7, 8, 9, 10 correspondent au virus recombinant VV.TG.25MG (2, 4, 6, 10 et 24 heures après le marquage); la piste M correspond à un marqueur de poids moléculaires (en daltons). La figure 3B représente les résul- tats obtenus avec les surnageants de culture correspondants. 26075 18 Ces résultats révèlent clairement qu'une protéine d'un poids moléculaire d'environ 25000 daltons a été immuno- précipitée par le sérum d'un malade atteint de SIDA. Cette protéine est présente dans les cellules BHK infectées par les virus vaccine recombinants, mais absente lors d'une infection par le virus vaccine sauvage (résultat non présenté sur la figure). Les virus vaccine recombinants VV.TG.25MG et VV.TG.25MA assurent donc la synthèse d'une protéine de struc- tare semblable à celle de la p25 du HIV puisqu'elle est par- faitement reconnue par le sérum de malade. Exemple 7 Production d'anticorps anti-p25 chez des souris vaccinées avec les virus vaccine recombinants VV.TG.25MA et VV.TG.25MG. 4 souris C57/B1 mâles de 7 semaines ont été inocu- lées par scarification de la base de la queue avec 4x107 ufp pour chacun des virus vaccine recombinants VV.TG.25MG et VV.TG.25MA. Après 4 semaines un prélèvement sanguin a été effectué sur les souris et une deuxième inoculation a eu lieu comme décrit précédemment. Trois semaines plus tard, les animaux sont sacrifiés, et la totalité de leur sang est pré- levée par ponction cardiaque. La capacité de ces sérums à reconnaître les proté- ines du HIV a été évaluée par la technique d'"immunoblot". Cette technique repose sur l'incubation des sérums avec une feuille de nitro-cellulose sur laquelle les protéines du HIV ont été préalablement adsorbées après électrophorèse en gel de polyacrylamide SDS. Les résultats obtenus avec les sérums du premier prélèvement, soit un mois après les vaccinations, révèlent que les sérums des souris inoculées avec les virus vaccine recombinants contiennent des anticorps capables de reconnaî- tre spécifiquement la protéine p25 du HIV. De plus, certains sérums sont également capables de reconnaître les épitopes communs entre la p25 et son précurseur p40 comme l'atteste la présence d'une bande au niveau de la p40. Ces anticorps ne sont pas présents dans le sérum de souris vaccinées avec un virus de la vaccine sauvage (résultats non présentés dans la figure). La figure 4 présente les résultats obtenus avec les sérums prélevés 25 jours après l'injection de rappel. Les pistes 1, 2, 3, 4 correspondent au sérum de 4 souris vacci- nées avec le virus recombinant VV.TG.25MA, les pistes 5, 6 correspondent au sérum de 2 souris vaccinées avec le virus recombinant VV.TG.25MG. Les sérums des 2 souris vaccinées avec le virus vaccine recombinant VV.TG. 25MG qui ne sont pas présentés dans la figure 4 donnent des résultats similaires. La piste T correspond à un sérum de malade atteint de SIDA. La présence sur la figure 4 de bandes correspondant à la p25, au précurseur p40 et au doublet caractéristique du précurseur p55 démontre une forte réponse immunologique chez les souris vaccinées avec les virus vaccine recombinants VV.TG.25MA et VV.TG.25MG. Les résultats présentés dans la figure 4 démontrent clairement que la vaccination de souris avec les recombinants VV.TG.25MA et VV.TG.25MG qui produisent la protéine p25 du HIV induit une réponse immunitaire spécifique chez ces ani- maux. De plus, les anticorps synthétisés reconnaissent égale- ment les précurseurs p55 et p40 ce qui confirme la haute spécificité de la réponse immunitaire chez les souris vacci- nées. 260 518 * La protéine recombinante ainsi obtenue peut être utilisée dans des kits de diagnostic pour détecter les anticorps potentiels présents dans le sang des malades ayant été en contact avec le virus. Ces tests peuvent être mis en oeuvre selon des processus connus de l'homme de l'art, par exemple par ELISA, RIPA, "Westhern Blot" (Immuno-empreinte). Cette protéine peut également être utilisée pour la réalisation d'hybridomes et d'anticorps monoclonaux destinés à détecter la présence de virus dans des échantillons. Les plasmides suivants ont été déposés le 28 novembre 1986 à la Collection Nationale de Cultures de Microorganismes de l'INSTITUT PASTEUR, 28 rue du Docteur-Roux, 75724 PARIS CEDEX 15: E. coli 1106 pTG2101 sous le n 1-631 E. coli 1106 pTG2102 sous le n 1-632. REFERENCES Drillien, R. & Spehner, D., Virology 131, 385-393 (1983). Fisher, A.G., Feinberg, M.B., Josephs, S.F., Harper, M.E., MarselLe, L.M., Reyes, G., Gouda, M.A., Aldovini, A., Debouk, C., Gallo, R.C. & Wong-Staal, F. Nature 320, 367- 371 (1986). Kieny, M.P., Lathe, R. & Lecocq, J.P. Gene 26, 91-99 (1983). Kozak, M. Cell 44, 283-292 (1986). Bathe, R., Hirth, P., Dewilde, M., Harford, N & Lecocq, J.P. Nature 284, 473-474 (1980). Mackett, M., Smith, G.L. & Moss, B. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 79, 7415-7419 (1982). Mackett, M. & Smith, G.L. J. Gen. Virol. 67, 2067-2082 (1986). Messing & Vieras, Gene 19, 269-276 (1982). Moss, B. Banbury Report Apr-May 1985 Cold Spring Harbor Laboratory, CSH, NY, USA. 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Starcich, B.R., Hahn, B.H., Shaw, G.M., McNeely, P.D., Modrow, S., liolf, H., Parks, E.S., Parks, W.P., Josephs, S.F., Gallo, R.C. & Wlong-Staal, F. Cell 45, 637-648 (1986). l;ain-Hobson, S., Sonigo, P., Danos, O., Cole, S. & Alizon, M. Cell 40, 9-17 (1985). REVENDICATIONS 1) Vecteur viral caractérisé en ce qu'il comporte au moins: - une partie du génome d'un virus vecteur, - un gène codant pour la protéine p25 du virus HIV, responsable du SIDA, - ainsi que les éléments assurant l'expression de cette protéine dans les cellules eucaryotes en culture. 2) Vecteur viral selon la revendication l, caractérisé en ce que la partie du génome d'un virus est une partie du génome de poxvirus. 3) Vecteur viral selon la revendication 2, caractérisé en ce que le poxvirus est le.virus de la vaccine. 4) Vecteur viral selon l'une des revendications I à 3, caractérisé en ce qu'il est choisi parmi: VV.TG.25MG - VV.TG.25MA. 5) Vecteur viral selon l'une des revendications 1 à 4, caractérisé en ce que la séquence d'ADN codant pour la protéine p25 est sous la dépendance d'un promoteur d'un gène du poxvirus. 6) Vecteur viral selon la revendication 5, caractérisé en ce que le promoteur est un promoteur du gène de la vaccine. 7) Vecteur viral selon la revendication 6, caractérisé en ce que la séquence d'ADN codant pour la protéine p25 est sous le contrôle du promoteur du gène de la protéine 7,5K de la vaccine. 8) Vecteur viral selon l'une des revendications 5 à 7, caractérisé en ce que la séquence codant pour la protéine p25 est clonée dans le gène TK de la vaccine. 9) ADN recombinant correspondant aux vecteurs selon l'une des revendications I à 8. ) Culture de cellules eucaryotes infectées par un vecteur viral selon l'une des revendications 1 à 8. 11) Procédé de préparation de la protéine p25 du virus responsable du SIDA, caractérisé en ce qu'on cultive des cellules selon la revendication 10 et qu'on récupère la protéine p25 produite. 12) Protéine p25 du virus responsable du SIDA obtenue par la mise en oeuvre du procédé selon la revendication 11. 13) A titre d'agent immunogène, la protéine p25 selon la revendication 12. 14) Vaccin caractérisé en ce qu'il est constitué par un vecteur viral selon l'une des revendications 1 à 8 et/ou par la protéine selon la revendication 12. ) Anticorps correspondant à la protéine p25 du virus responsable du SIDA, caractérisé en ce qu'on infecte un organisme vivant avec un vecteur viral selon l'une des revendications I à 8 ou en ce qu'on lui inocule la protéine p25 selon la revendication 12 et en ce qu'on récupère les anticorps formés après un temps déterminé. 16) A titre d'agent de diagnostic, la protéine p25 selon la revendication 12 ou un anticorps selon la revendication 15, marqué ou non.