FR 2579994 A1 19861010 FR 8604683 A 19860402 La présente invention se rapporte à un procédé pour la bioconversion de certains composés chimiques pré- curseurs en produits désirés, au moyen de cellules dont la division a été arrêtée. La division des cellules est arrêtée par irra- diation de ces cellules au moyen de rayons X, de rayons gamma ou d'un autre rayonnement capable d'arrêter sensi- blement la division des cellules. On choisit la dose de rayonnement de manière à arrêter la division des cellules, la capacité des cellules à effectuer des bioconversions n'étant toutefois pas sensiblement affaiblie. Cela est contraire aux prévisions de la technique puisqu'on admet généralement que, lorsque l'arrêt de la division des cel- lules est obtenu par un rayonnement électromagnétique, il en résulte également une diminution importante ou même une disparition de la capacité des cellules à engendrer des bioconversions. On peut utiliser une grande variété de cellules, cellules de plantes, bactéries, cellules de levures, cel- lules provenant de mammifères, etc. On peut utiliser les cellules en suspension ou bien elles peuvent être emprison- nées dans une matrice appropriée ou fixées à un support approprié. Elles peuvent être emprisonnées dans des grains de polymère. On a établi que le procédé de l'invention convient pour des conversions au stade industriel. Les cellules à division arrêtée peuvent être utilisées pendant de longues durées, dans des procédés par lots ou des pro- cédés de conversion continue. La production de composés organiques par des cellules vivantes est aussi ancienne que l'histoire humaine. On peut donner comme exemple la fermentation du sucre en éthanol et la préparation de pain levé. Plus particulière- ment, on utilise beaucoup des cellules de plante cultivées in vitro pour la production de composés organiques de va- leur, tels que des parfums, des produits pharmaceutiques et des essences (voir par exemple Staba, E.J. Devel. Micro. 4, 192-198 (1963); Kurz et al., Adv. Appl. Microbiol. 25 209-240 (1979)). La production de tels composés par des cellules cultivées peut être effectuée suivant deux tech- niques principales: sans introduction d'un précurseur spé- cifique, et avec addition aux cellules cultivées de précur- seurs spécifiques qui sont biotransformés en produits de valeur (Reinhard et al., Adv. Biochem. Eng. 16, 50-83 (1980); Shargool, P.D., Appl. Biochem. Biotech. 7 (1982)). L'utilisation industrielle de cellules de plante et d'au- tres cellules par l'une ou l'autre des techniques ci- dessus a été gênée par plusieurs difficultés, notamment: (1) les cellules en suspension libre sont inférieures aux cellules immobilisées, dans les biotechnologies avancées (Brodelius et al., Adv. Appl. Micro. 28, 1-26 (1982); (2) les cellules cultivées à division normale nécessitent, parmi d'autres composants du milieu, une alimentation cons- tante en composés organiques coûteux pour maintenir l'ac- tivité métabolique intervenant dans la division des cel- lules, ce qui accroît les coûts de production; (3) lorsque des cellules cultivées in vitro avec division sont immobilisées dans des polymères (par exemple des grains d'alginate), les cellules tendent à se libérer progressive- ment du piégeage, ce qui engendre un mélange de cellules immobilisées et de cellules en suspension libre; un tel mélange nuit à l'application biotechnologique efficace de ces cellules pour la production de composé organique. Un procédé capable de conserver la capacité des cellules cultivées à produire et/ou transformer un composé organique spécifique,mais qui empêche la division des cel- lules, éviterait les difficultés précitées. L'arrêt de la division des cellules par addition d'inhibiteurs métaboli- ques et/ou par manque d'alimentation en certains composants du milieu est indésirable pour plusieurs raisons (introduc- tion de composés toxiques dans le système, changements mé- taboliques importants, etc.). L'arrêt de la division des cellules par irradia- tion, par exemple au moyen de rayons X, rayons gamma et autres rayonnements électromagnétiques et de particules, est un phénomène bien connu pour les cellules végétales, animales et microbiennes (Lea, D. E. Action of Radiation on Living Cells (2ème Edition), University Press, Cambridge, (1955)>. On n'a pas utilisé jusqu'à présent de cellules de plantes, animaux ou microorganismes dont la division a été arrêtée par irradiation, dans le cas de la biotech- nologie industrielle de biotransformation et de production de composés organiques. La présente invention procure un procédé simple et d'application générale pour arrêter la division des cellules tout en conservant l'aptitude de ces cellules à la biotransformation et à la production de composés organiques spécifiques. Conformément à l'invention, on obtient un pro- cédé pour la transformation à l'échelle industrielle de composés chimiques, au moyen de cellules à division arrê- tée. Les cellules sont avantageusement traitées par des rayons X ou des rayons gamma de façon à arrêter la division des cellules sans affaiblir leur capacité à effec- tuer des bioconversions. Contrairement à ce qui était admis jusqu'à pré- sent, l'arrêt de la division des cellules par de tels mo- yens ne réduit pas nécessairement sensiblement les capaci- tés de bioconversion de ces cellules traitées. L'invention est applicable à une grande variété de cellules, par exemple cellules de plantes, cellules de levures, cellules de bactéries, cellules de vertébrés, etc. Le rayonnement utilisé pour arrêter la division de ces cellules peut être de divers types, par exemple ra- yonnement électromagnétique, irradiation par des particu- les, etc. Les rayonnements préférés sont les rayons gamma et les rayons X de différentes longueurs d'onde et inten- sités. Dans ce qui suit, l'invention est illustrée avec référence à des cellules de plante, de levure, de bactérie et de mammifère. Il est entendu que c'est seulement à ti- tre d'illustration et que l'invention s'applique à une grande variété d'autres cellules. Des cellules, obtenues par des moyens connus (Reinert et al. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, p. 803, Springer Verlag, Berlin, (1977)) à partir d'un extrait de plante de Mentha sp., Nicotiana sp., d'autres plantes ou d'autres organismes, sont suspendues dans un milieu liquide, tel que B5 (Gamburg et al., Exp. Cell Res. , 151, (1968)) ou un autre milieu nutritif analogue ap- proprié au type de cellule donné. On conserve les cellules ainsi cultivées et on les développe dans des cultures à secouage ou par tout autre moyen permettant d'apporter des conditions de croissance pour ces cellules de plante. On dilue périodiquement les.cellules par apport de milieu nu- tritif, au moyen de techniques usuelles qui sont largement décrites dans la littérature correspondante (par exemple, Reinert et Bajaj, ibid (1977); Shargool, ibid. (1982)). Pour l'utilisation dans la production de composés biochi- miques spécifiques (par exemple Staba, ibid. (1963)) ou pour la biotransformation d'un précurseur spécifique en un produit spécifique (Reinhard et Alfermann, ibid. (1980)) par la procédure habituellement utilisée, on transfère les cellules dans un milieu de production ou un milieu de trans- formation, respectivement. Ce dernier contient le précur- seur pour la biotransformation. Pour la transformation de (-) menthone en (+) néomenthol par Mentha ligne 193, en suspension libre, on ajoute 20 à 80 mg/l de menthone au milieu de transformation constitué de composants B5 de Gamborg et on conserve les cellules en culture à secouage, à des températures comprises entre 23 et 27 C (Aviv et al., Planta Medica, 42, 236-243 (1981)). Les techniques de bio- transformation peuvent être appliquées de façon analogue à d'autres cellules, d'origine végétale (Reinhard et Alfermann, ibid. (1980)) ou provenant d'autres organismes, ainsi que pour la production directe de substances biochi- miques. Conformément au procédé de la présente invention, on expose les cellules (avant utilisation pour la bio- transformation ou la production) à une irradiation, à une dose qui arrête pratiquement la division des cellules. La dose respective pour les cellules Mentha et Nicotiana est de 50 krad mais d'autres doses peuvent s'appliquer pour des cultures de cellules spécifiques. Le rayonnement gamma est fourni par une source de cobalt60, par exemple une machine Cobalt 60, G.B. 150A, Atomic Energy of Canada, et l'irradiation aux rayons X est fournie par une machine de Roentgen émettant des rayons X. La première source est préférable car elle demande beaucoup moins de temps. Après l'irradiation, on lave les cellules une première fois dans le milieu de culture approprié et on les maintient en cul- ture à secouage pendant plusieurs heures (habituellement, 18 à 24 h) avant de les relaver et de les exposer ensuite au précurseur pour biotransformation ou pour production suivant des techniques connues (par exemple Shargool, ibid (1982)). On laisse ensuite incuber les cellules irradiées, pendant le processus de biotransformation ou de production, sous la forme de cellules en suspension libre ou de cellu- les piégées et immobilisées par des techniques connues (par exemple Brodelius et Mosbach, ibid. (1982); Galun et al., Planta Medica 49, 9-13 (1983)). On utilise généralement une technologie de culture par cuvée ou par secouage, mais le procédé de la présente invention peut également être appli- qué à des cellules dans des réacteurs à colonne ou des ré- acteurs à flux continu. Dans la technologie de culture par cuvée, on peut séparer le milieu des cellules après incubation et on lave les cellules et on les maintient pendant 6 heures ou plus dans un milieu nutritif; on effectue ensuite un cycle de production supplémentaire et on peut répéter cette procé- dure plusieurs fois avec ou sans détérioration limitée de la capacité de biotransformation et/ou de production des cellules irradiées. Dans les incubations uniques, multiples ou continues, on sépare le milieu liquide des cellules par l'un des procédés habituels (généralement par centrifuga- tion) et on extrait le produit du milieu liquide. Les exemples spécifiques ci-après montrent que les cellules dont la division a été arrêtée conservent leur aptitude à engendrer des conversions biochimiques. Ces exemples sont illustratifs et non limitatifs. EXEMPLE 1 Pour vérifier la capacité de cellules Mentha, dont la division de cellule a été arrêtée, à transformer 1a (-) menthone en (+) néomenthol, on procède à l'expérien- ce ci-après. On conserve des cellules Mentha souche 193 en culture par secouage sur un milieu B5 modifié (Aviv et al., ibid.(1981)) et on les transfère chaque semaine sur un mi- lieu neuf. On constitue ainsi les cultures de base. Toutes les opérations jusquà l'extraction des produits sont exé- cutées dans des conditions axéniques. Pour l'irradiation par les rayons gamma, on prélève les cellules de la culture de base, on les lave une fois dans B5, on les remet en sus- pension dans B5 jusqu'à une densité de 50% en volume et on les transfère dans des flacons Erlenmeyer de 500 ml. On expose les flacons à une dose de 50 krad de rayons gamma, au moyen d'une machine Cobalt 60, G.B. 150A Atomic Energy Canada, à la vitesse de 3 krad par minute, et on remet en- suite en suspension dans le milieu B5. Pour évaluer l'effet d'arrêt de division produit par l'irradiation, on étale des échantillons de 1 ml de cellules irradiées, dans des cuvettes de Pétri en matière plastique de 9 cm, sur un mi- lieu B5 solidifié (à 1,0% d'agar). En parallèle, on appli- que de la même façon des cellules non irradiées (témoin non irradié). On fait ensuite incuber les plaques (dans l'obs- curité) à 25 + 2oC ou bien on les transfère au froid (2-4 C) comme témoins non cultivés. Après 12 jours, on évalue la croissance des cellules sur plaque. Chacun des quatre grou- pes de traitement (irradié et cultivé, non irradié et cul- tivé, irradié et stocké au froid, non irradié et stocké au froid) comprend quatre plaques. Sur les quatre traitements, seules les cellules non irradiées et cultivées se sont di- visées et ont rempli la surface des plaques (figure 1), ce qui démontre l'efficacité du rayonnement gamma pour arrêter la division des cellules. Pour l'évaluation de la capacité de transforma- tion de cellules Mentha à division arrêtée, les cellules irradiées respectives, obtenues par le procédé décrit plus haut en détail, sont transférées dans des flacons Erlen- meyer de 250 ml et mises en suspension dans 100 ml (volume total) de milieu liquide B5 à une densité de 30% en volume, et on ajoute 20 1 d'une solution de menthone dans l'éthanol à 100 mg/ml. En parallèle (témoin), on met en suspension des cellules non irradiées, avec du menthone, de la même manière. Les suspensions sont ensuite maintenues sur un dis- positif à secouage tournant (120 t/mn) à 25 - 2 C. On ex- trait périodiquement des échantillons et on détermine leur composition en monoterpène par la méthode usuelle de chroma- tographie gaz-liquide (Aviv et al., ibid. (1981), Galun et al., ibid. (1983)). Les cinétiques de la conversion de men- thone en néomenthol, illustrées sur la figure 2, démontrent clairement que les cellules Menthairradiées aux rayons gamma (dans lesquelles la division de cellule a été arrêtée comme le montre la figure 1), ont conservé leur capacité de conversion. EXEMPLE 2 Pour vérifier si la capacité de biotransformation est ou non conservée dans des cellules à division arrêtée qui sont immobilisées, on procède à l'expérience ci-après. 257,994 On utilise la même base de cellules Mentha que dans l'exemple 1. La conversion de menthone en néomenthol sert à démontrer la capacité de biotransformation. Le sys- tème de transformation à cellules en suspension libre, ir- radiées ou non aux rayons gamma, est le même que dans l'e- xemple 1 mais on ajoute 5 mg de menthone à chaque flacon. La procédure d'immobilisation est conforme à la spécifica- tion donnée par Galun et al. ibid. (1983), avec certaines modifications comme suit. On cultive une base de Mentha souche 193, jusqu'à une densité de 30% en volume tassé. On filtre ensuite les cellules sur un filtre "Nalgi" de 0,45 Dm, on les lave une fois avec du milieu B5 sur le même filtre et on utilise 15 g de cellules,séchées par filtrage, pour l'immobilisation avec le polymère. On met en suspen- sion 1,5 g d'un hydrazide de polyacrylamide linéaire (PAAH) dans 50 ml d'eau, on stérilise à chaud et on refroidit à C. La suspension stérile refroidie de PAAH est ensuite mélangée, sur de la glace, avec les cellules séchées par filtrage et on ajoute une quantité stoechiométrique (soit 4 ml d'une solution à 5%) de glyoxal, sous agitation vigou- reuse, de manière à réticuler le PAAH et à provoquer le piégeage des cellules. On laisse durcir le gel pendant 15 minutes, on le découpe en cubes de 0,3 cm3 environ et on laisse à nouveau durcir. Le gel est ensuite chassé à tra- vers une seringue usuelle (sans l'aiguille) de manière à former des grains qui sont lavés une fois dans du milieu B5 puis mis en suspension dans un volume total de 100 ml dans un ErIenmeyer de 250 ml. Finalement, on ajoute 5 mg de menthone, à partir d'une solution dans l'éthanol, et on fait incuber les flacons sur -un dispositif à secouage rotatif (120 t/mn) à 25 C. On applique la même procédure à des cellules traitées aux rayons gamma, obtenues comme dans l'exemple 1. Chacun des quatre traitements - (1) non-irradié et en suspension libre; (2) irradié et en suspension libre; (3) non irradié et emprisonné dans le PAAH; (4) irradié et emprisonné dans le PAAH - est exécuté en double. On prélève périodiquement des échantillons et on détermine leur composition en monoterpène, comme dans l'exemple 1. Les résultats sont reportés sur la figure 3. Les expérien- ces en double donnent des résultats similaires (voir sur la figure 3 les courbes pour les cellules irradiées et en suspension libre, pour lesquelles les résultats sont pré- sentés séparément pour chacun des deux flacons, et non en valeur moyenne comme pour les trois autres traitements). Il est clair que les cellules irradiées aux rayons gamma, aussi bien lorsqu'elles sont piégées qu'en suspension libre, conservent leur capacité de biotransformation, ce qui com- plète et étend les résultats de l'exemple 1. EXEMPLE 3 Afin de vérifier si les cellules à division arrê- tée peuvent ou non effectuer une biotransformation répétée, on procède à l'expérience ci-après. Des suspensions de cel- lules sont préparées et irradiées aux rayons gamma, comme dans l'exemple 1. On fait incuber des suspensions de cel- lules dans quatre flacons avec du menthone, pendant 18 heu- res. On récolte ensuite les deux flacons et on détermine la composition en monoterpène (extraction totale d'une jour- née) et les cellules des deux autres flacons sont séparées des milieux par centrifugation. On analyse les milieux pour déterminer les monoterpènes (extrait de milieu + 1 jour) et les cellules sont remises en suspension dans du milieu B5 pendant 30 heures. On ajoute alors du menthone (5 mg par flacon) aux cellules en suspension et on fait incuber les cellules à nouveau pendant 18 heures. On sépare alors les cellules du milieu, comme ci-dessus, et on détermine la composition en monoterpène (extrait de milieu + 3 jours). On remet en suspension les cellules dans du milieu B5 pen- dant 30 heures. On ajoute ensuite du menthone (5 mg par flacon)aux cellules en resuspension et on fait incuber les deux flacons une troisième fois pendant 18 heures. On sé- pare alors le milieu et on détermine par analyse la compo- sition en monoterpène du milieu, comme ci-dessus (extrait de milieu + 5 jours). D'autre part, deux flacons contenant des cellu- les irradiées aux rayons gamma sont entretenues sur un dis- positif à secouage rotatif, à 25 C pendant 6 jours. On ajoute ensuite 5 mg de menthone et on fait incuber les flacons pendant 18 heures. On analyse alors le contenu des flacons pour la composition en monoterpène, comme dans l'exemple 1 (extrait total + 6 jours). Les chromatographies gzz-liquide des analyses sont représentées sur la figure 4. Les résultats montrent que les cellules irradiées aux ra- yons gamma sont capables de biotransformations multiples et que ces cellules peuvent être conservées en cultures par secouage pendant 6 jours sans affaiblissement de leur capacité de biotransformation. EXEMPLE 4 Afin de déterminer si la rétention de la capacité de biotransformation de cellules à division arrêtée est ou non limitée aux cellules Mentha et à la conversion de men- thone en néomenthol, ou si la capacité de biotransformation de cellules à division arrêtée est un phénomène général, on procède à la biotransformation de géraniol en produits de conversion, avec des cellules Mentha et Nicotiana irra- diées aux rayons gamma. On prépare des flacons Erlenmeyer (250 ml) conte- nant 100 ml de suspensions de cellules de Mentha souche 193 irradiées aux rayons gamma, comme dans l'exemple 1. On pré- pare également des flacons semblables, avec 100 ml d'une suspension de cellules Nicotiana sylvestris souche SH irra- diées aux rayons gamma. De plus, on prépare de tels flacons avec des cellules irradiées aux rayons gamma et piégées au PAAH de Mentha souche 193 et de Nicotiana sylvestris souche SH. Chacune des quatre suspensions de cellules irra- diées: (1) Mentha en suspension libre,.(2) Mentha piégée au PAAH, (3) Nicotiana en suspension libre, (4) Nicotiana piégée au PAAH, est ensuite traitée de la manière ci-après. On ajoute 10 mg de géraniol par flacon et on fait incuber le flacon pendant 6 heures (cellules Mentha) ou pendant 13 heures (cellules Nicotiana) sur un appareil rotatif à secouage, à 25 C. On extrait le milieu et on l'analyse pour déterminer les monoterpènes (comme dans l'exemple 3),puis on remet les cellules en suspension dans 100 ml de milieu B5, dans des flacons de 250 ml traités par secouage comme ci-dessus pendant 18 heures (Mentha) ou 9 heures (Nico- tiana). On ajoute ensuite 10 mg de géraniol, on procède à une deuxième transformation comme ci-dessus et on analyse le milieu pour les monoterpènes, comme ci-dessus. On ré- pète le processus une fois (Mentha) ou deux fois (Nicotiana), ce qui donne au total 3 ou 4 biotransformations consécuti- ves avec les cellules Mentha ou Nicotiana. Les chromatogra- phies gaz-liquide sont représentées sur les figures 5 et 6 pour les cellules Mentha et Nicotiana irradiées aux rayons gamma, respectivement. Les cellules Mentha et Nicotiana irradiées aux rayons gamma sont capables d'effectuer des biotransforma- tions multiples de géraniol, avec peu ou pas de perte de capacité de conversion. Seules, les cellules Mentha en sus- pension libre et irradiées aux rayons gamma perdent une par- tie de cette capacité de conversion à la troisième passe de biotransformation. Cette capacité de conversion est totale- ment conservée par les cellules irradiées aux rayons gamma et piégées au PAAH, aussi bien pour Mentha que pour Nico- tiana. EXEMPLE 5 Afin de déterminer si la conservation de la capa- cité de biotransformation existe également pour des micro- organismes dans lesquels la division des cellules est ar- rêtée par irradiation aux rayons gamma, on applique le procédé à une levure (Saccharomyces cerevisiae). On expose des cellules de levure de souche Y-567 à une dose de rayons gamma de 400 krad, ce qui provoque un arrêt de division à 99,5%, puis on les met en suspension à une densité de 4 mg de cellules séchées par ml de milieu contenant 10% de glu- cose. Des cellules de levure non irradiées sont mises en suspension comme ci-dessus, pour servir de témoin. Les sus- pensions sont entretenues en cultures à secouage à 30"C. On extrait périodiquement des parties aliquotes pour analy- ser les concentrations en glucose et éthanol pendant l'in- cubation. Les cellules de levure à division arrêtée conser- vent leur capacité de fermentation de glucose en éthanol (figure 7) et donnent une fermentation initiale plus rapide que les cellules de levure du témoin {non irradiées). EXEMPLE 6 Afin de déterminer si la capacité de biotrans- formation est ou non également conservée par des bactéries dans lesquelles la division de cellule a été arrêtée par irradiation aux rayons gamma, on procède à un essai avec Mycobacterium NRRL 3805. Cette souche de Mycobacterium sature la liaison A 1 du 1,4-androstadiène 3,17-dione (ADD). mg de bactéries à l'état frais (8,4 mg. de poids sec) sont (1) non irradiées (témoin), (2) irradiées à une dose de 500 krad de rayons gamma. Les bactéries sont mises en suspension dans un tampon phosphate 0,05 M, pH 7,0 et 0,1 mU de ADD. On fait incuber les suspensions sur un appareil à secouage (130 t/mn) à 30 C. On prélève des échantillons pour l'analyse HPLC de phase inverse du produit (AD). On obtient les résultats ci-après, exprimés en AM de produit. Temps lh 2h 3h 4h 5h non irradiées 5,95 11,57 16,28 20,86 25,73 irradiées aux rayons gamma 5,92 10,86 17,26 22,94 24,57 La pente calculée pour les bactéries non irradiées et irra- * diées aux rayons gamma est de 5,09 et 5,15 respectivement, ce qui correspond à un rendement relatif total de 100% et 101,2% pour les bactéries non irradiées et irradiées, res- pectivement. Par conséquent, les bactéries dans lesquelles la division des cellules a été arrêtée par irradiation aux rayons gamma conservent complètement leur capacité de trans- formation stérotde. EXEMPLE 7 Afin de vérifier la capacité de cellules de mammi- fères,à division arrêtée par irradiation à engendrer la bio- conversion d'un métabolite spécifique, on applique des cel- lules de murin de souche P388D1, de type macrophage, à rai- son de 4 x 105 cellules par plaque environ. Après 4 jours de croissance, un groupe de plaques est irradié aux rayons gamma (15 krad) pour arrêter la division des cellules. Un autre groupe de plaques (témoin) n'est pas irradié. Le mi- lieu est changé dans chacune des plaques et on ajoute de l'acide arachidonique (3 uM). On extrait le milieu de cha- que plaque, 4 heures après, et on détermine la concentra- tion en prostaglandine-E2 dans le milieu, par essai radio- immunologique. Aussi bien pour les plaques irradiées aux rayons gamma que pour les plaques non irradiées (témoin) on trouve une concentration de prostaglandine de 1250 pg/ml - 150, ce qui indique que l'arrêt de la division des cel- lules provoqué par irradiation n'a pas diminué cette bio- transformation dans une souche de cellules de mammifère. Il est entendu que des modifications de détail peuvent être apportées dans la forme et la mise en oeuvre du procédé suivant l'invention, sans sortir du cadre de celle-ci. Revendications 1. Procédé de bioconversion, pour la conversion d'un précurseur en un produit désiré, caractérisé en ce qu'il consiste à mettre en contact ce précurseur avec des cellules dont la division a été arrêtée, qui conservent leur capacité à effectuer une bioconversion. 2. Procédé suivant la revendication 1, caracté- risé en ce qu'on utilise des cellules qui ont été irradiées par un rayonnement électromagnétique ou de particules de fa- çon à provoquer l'arrêt de la division des cellules sans affaiblir leur capacité de bioconversion. 3. Procédé suivant la revendication 1-Iu 2, carac- térisé en ce que les cellules sont emprisonnées dans une ma- trice de polymère ou sont fixées à un substrat solide. 4. Procédé suivant l'une des revendications 1 à 3, caractérisé en ce que les cellules sont choisies parmi des cellules végétales, des cellules de levure, des cellu- les de bactéries et des cellules de vertébrés. 5. Procédé suivant l'une des revendications 1 à 4, caractérisé en ce qu'un composé chimique précurseur spécifique est converti en un composé qui est un parfum, un composé pharmaceutiquement actif ou une essence. 6. Procédé suivant l'une des revendications 1 à 5, caractérisé en ce que les cellules sont irradiées alors qu'elles sont en suspension, qu'elles sont piégées dans une matrice de polymère ou qu'elles adhèrent à un sup- port solide. 7. Procédé de bioconversion pour la convers-in d'un précurseur chimique donné en un composé chimique donné, caractérisé en ce qu'il utilise des cellules dont la division a été arrêtée, suivant l'une des revendications précédentes. 8. Poduit chimique obtenu par bioconversion d'un précurseur, caractérisé ence qu'il est obtenu par un procé- dé suivant l'une des revendications 1 à 7. Légendes des figures Figure 1: Effet de l'irradiation aux rayons gamma (50 krad) sur la division de cellules Mentha. Des cellules non irradiées (témoin)et des cellules irradiées sont appliquées sur un milieu nutritif solidifié et stockées au froid (pas de culture) ou culti- vées à 25 C pendant 12 Jours. Figure 2: Cinétique de la biotransformation de menthone en néomenthol par des cellules Mentha 193 non irradiées et irradiées aux rayons gamma. Figure 3: Biotransformation de menthone par des cellules Mentha en suspension libre et piégées au PAAH qui sont irradiées aux rayons gamma ou non. Figure 4: Biotransformation multiple de menthone par des cellules Mentha irradiées aux rayons gamma. Figure 5: Biotransformation multiple de géraniol par des cellules Mentha irradiées aux rayons gamma. Figure 6: Biotransformation multiple de géraniol par des cellules Nicotiana irradiées aux rayons gamma. Figure 7: Cinétique de la conversion de glucose en éthanol par des cellules Saccaromyces cerevisiae dans lesquelles la division de cellule a été arrêtée par un rayonnement gamma de 400 krad (trait plein>ou n'a pas été arrêtée (témoin en pointil- lé).