FR 2583429 A1 19861219 FR 8509225 A 19850618 Les interférons humains ont été décrits par Isaacs et Lindenmann (1957) comme un groupe de protéines capables d'induire un état de résistance aux virus dans les cellules cibles. Depuis,de nombreuses activités biologiques importantes ont été décrites (voir Stewart, 1979), notamment la modulation immunitaire et l'inhibition de la proliféra- tion cellulaire, de même que des effets directs sur la croissance tumorale chez les animaux. C'est pourquoi on espère que dans un futur proche les interférons joueront un rôle important dans le traite- ment clinique des infections virales et des tumeurs. Parmi les trois classes d'interférons humains, leucocytaire (IFN-a), fibroblastique (IFN-e) et immun (IFN-y), l'IFN-y a démontré qu'il était le plus actif dans ses propriétés immunorégulatrices (Sonnenfeld et coll. 1977), de régulation cellulaire (Blalock et coll., 1980) et d'inhibition des tumeurs (Salvin et coll., 1975; Glasgow et coll., 1978). L'IFN-y naturel est induit dans des cultures de lymphocytes de sang périphérique par stimulation mitogénique. C'est seulement récemment que Rinderknecht et coll. (1984) ont décrit la séquence correcte de la protéine mature et montré son type et son degré de glycosylation. La séquence protéique déduite des expériences de clonage de cADN a conduit à diverses ambiguités concernant les extrémités N- et C-terminales de la molécule biologique- ment active mature. Par exemple, la séquence de la protéine choisie pour être exprimée dans Escherichia coli et la levure et basée sur les informations sur le cADN publiées par Gray et coll. (1982) ne correspond pas exactement à la séquence naturelle, bien que ces modifica- tions n'affectent pas l'activité biologique de la molécule. La présente invention concerne un système reposant sur un virus recombinant de la vaccine (WVV) ayant incorporé le gène codant pour la protéine IFN-y et qui permet la synthèse efficace d'une protéine qui est libérée dans le milieu de culture. Cette synthèse peut être obtenue dans différents types de cellules eucaryotes. En outre, ce virus peut être propagé dans les animaux vivants, ce qui permet l'étude in vivo de l'effet immunorégulateur d'un taux élevé d'IFN-y endogène. Plusieurs groupes ont récemment mis en évidence l'utilisation de recombinants vivants du virus de la vaccine pour exprimer un antigène de l'Influenza, de l'Hépatite B et la glycoprotéine de la rage pour immuniser contre ces maladies ou infections (Smith et coll. 1983; Panicali et coll., 1983; Kieny et coll. 1984). L'expression d'une séquence codante pour une protéine exogène dans le virus de la vaccine (WVV) implique nécessairement deux étapes: 1) La séquence codante doit être alignée avec un promoteur de WVV et être insérée dans un segment non essentiel de l'ADN de VV,cloné dans un plasmide bactérien approprié. 2) Les séquences d'ADN de WVV situées de part et d'autre doivent permettre des recombinaisons homologues in vivo entre le plasmide et le génome viral. Une double recombinaison réciproque conduit à un transfert de l'insert d'ADN du plasmide dans le génome viral par lequel il sera propagé et exprimé (Panicall et Paoletti, 1982; Mackett et coll., 1982; Smith et coll., 1983; Panicali et coll., 1983). La présente invention concerne un poxvirus, en par- ticulier un virus de la vaccine, caractérisé en ce qu'il com- porte la séquence d'ADN codant pour la protéine IFN-y humaine. Ce virus comportera de préférence l'ensemble des éléments assurant l'expression d'un IFN-y mature complet qui sera sécrété par les cellules dans le milieu. En particulier, il comportera un promoteur d'un gène de poxvirus, en particulier de la vaccine, situé en amont de la séquence codant pour la protéine IFN-y humaine, tel que le pro- moteur du gène de 7,5 k, noté P 7,5 k, qui assurera l'expres- sion de la séquence d'ADN codant pour IFN-y nommée ci-après d'ADN (IFN-y). Cet ensemble promoteur/séquence d'ADN (IFN-y) sera inséré dans une séquence non essentielle de l'ADN de la vaccine telle qu'un gène du virus de la vaccine, par exemple le gène TK, ce qui fournit une possibilité de sélection comme cela sera expliqué ci-après. Bien entendu, dans le cadre de la présente invention, lorsque l'on parle de "virus de la vaccine" il peut s'agir du virus entier ou d'un virus dont certaines parties non essentielles ont été délétées. L'invention concerne également des cellules de mammifère infectées par un virus tel que défini précédemment. Parmi les cellules particulièrement utilisables, il faut citer notamment les cellules Vero, bien que d'autres cellules puissent être utilisées, comme cela sera décrit dans les exemples. L'invention concerne également un procédé de préparation d'IFN-y humain obtenu par culture des cellules décrites précédemment dans un milieu de culture approprié. L'invention concerne,enfin, la protéine IFN-y humaine obtenue par la mise en oeuvre dudit procédé. L'invention concerne, en particulier les composition thérapeutiques contenant à titre de principe actif l'IFN-y obtenu par la mise en oeuvre du procédé selon l'invention, ainsi que les compositions thérapeutiques contenant à titre de principe actif un poxvirus, en particulier un virus de la vaccine, modifié comme cela a été décrit précédemment. Dans ce dernier cas, le virus de la vaccine utilisé comme agent thérapeutique de traitement du corps humain ou d'un animal doit permettre la formation de l'IFN-y in vivo. La préparation du virus recombinant selon l'inven- tion comporte, notamment, les étapes suivantes: 1) Une restructuration d'une extrémité du cADN (IFN-y) pour obtenir M13pTG05; 2) La synthèse d'un mini-plasmide pTG1H à partir de pBR322; 3) L'insertion dans ce miniplasmide du fragment Hin-J portant le gène TK de WVV; 4) L'insertion dans le gène TK du promoteur de la protéine 7,5 k; ) L'insertion d'un polylinker en aval du promoteur P 7,5 k; 6) L'insertion entre deux sites de restriction du polylinker de la séquence de cADN complète codant pour la protéine IFN-y; 7) Le clonage des éléments essentiels de ce dernier plasmide dans le virus de la vaccine. Les exemples suivants illustrent les propriétés des différents composants obtenus. Les différents matériels mis en oeuvre sont identifiés dans les exemples. Sauf indication contraire, les enzymes sont utilisées dans les conditions préconisées par le fabricant et les techniques mises en oeuvre sont connues de l'homme de métier. Les séquences d'acides aminés et les séquences de nucléotides représentées sur les figures ne sont pas reprises dans le corps de la description pour ne pas l'alourdir mais elles en constituent une partie intégrante. Sur les figures ci-annexées, la figure 1 représente la séquence du cADN de pTG11 codant pour la protéine IFN-y, la figure 2 schématise la mutation du cADN précédent pour introduire un site BglII, la figure 3 schématise la structure de pML2, la figure 4 schématise la préparation de pTG186-POLY, la figure 5 schématise la préparation de pVVTG41, la figure 6 schématise le clonage dans le virus de la vaccine, la figure 7 représente la fluorographie des frag- ments d'ADN de virus recombinant TK après. hybridation avec une sonde cADN(IFN-y) marquée, la figure 8 représente la courbe de la cinétique de synthèse et de libération dans le milieu de l'IFN-y par des cellules infectées par le virus recombinant vaccine IFN-y à 3.10=2 MOI. 1 - Construction des vecteurs La séquence de cADN du clone pTG11, isolé à l'origine à partir d'une banque provenant d'ARN de lym- phocytes stimulés par mitogénèse, est donnée à la figure 1. Cette séquence diffère de la première séquence publiée par Gray et coll. (1982) à la position 521. Le triplet CAA codant pour Gln est remplacé dans pTG11 par le triplet CGA qui code pour Arg. En effet, de nombreux groupes ont confirmé cette mutation et, en outre, la séquence génomique montre une guanidine à la place de l'adénine qui avait été décrite. La séquence codant pour IFN-y dans pTG11 est précédée par 30 bases de la région non codante de l'extrémité 5'. Afin d'écarter la présence de l'élongation poly-dG/dC entre le promoteur P7,5 k et le départ de la séquence de la protéine dans la futureconstruction, on introduit un site de restriction BglII en amont du codon de départ, ce qui facilitera également le transfert du cADN dans le vecteur W. La mutation spécifique du site est effectuée selon le schéma représenté à la figure 2. On insère dans l'ADN bicaténaire du phage M13mp8 un fragment de restriction PstI-HindII de 1100 bp provenant du cADN de IFN-y contenu dans pTG11. L'ADN mono- caténaire dérivé de M13mp8 est hybridé avec un oligomère synthétique de 18 nucléotides ayant la structure représentée sur la figure 2, qui remplace une séquence AT par une séquence On obtient ainsi un dérivé du phage M13 nommé M13pTG05 qui par digestion avec BglII et EcoRI conduit à un fragment de 950 bp ne contenant plus d'extrémité dG/dC et codant pour la protéine IFN-y complète. 2) Construction des plasmides hybrides Les tailles combinées des différents éléments nécessaires pour le transfert de la séquence codant pour l'IFN-y humain dans le génome de W et son expression subséquente sont de l'ordre de plusieurs kb. Il a donc été jugé nécessaire de minimiser la taille du plasmide de réplication dans E. coli utilisé pour le travail de construction, de façon à faciliter les manipulations nécessaires. Le fragment HindIII (Hin-J) du génome de WV contient le gène complet de la thymidine kinase (TK) qui a déjà été utilisé précédemment pour permettre l'échange et la recombinaison d'ADN étranger dans le génome de W (Mackett et coll., 1982). Il est important de noter que le transfert d'un insert dans le gène TK de WVV crée un virus TK déficient qui peut être reconnu. Il a tout d'abord été nécessaire de produire un plasmide de petite taille portant un site unique HindIII utilisable pour l'intégration du fragment Hin-J de l'ADN de VVW. En outre, il était nécessaire d'éliminer les séquences de restriction non nécessaires du plasmide de façon à permettre les manipulations suivantes. La construction a été amorcée à partir du plasmide pML2 (Lusky et Botchan, 1981) qui est un vecteur dérivé du plasmide pBR322 par délétion spontanée du segment entre les nucléotides 1089 et 2491 (figure 3). D'abord la séquence de PstI a été éliminée par insertion du fragment AhaIII-AhaIII de pUC8 (Vieira et Messing, 1982) entre deux sites AhaIII de pML2 en éliminant 19 paires de bases. On a utilisé la méthode de "linker-tailing" (Lathe et coll., 1984) pour insérer dans ce plasmide un linker HindIII entre les sites NruI et EcoRI préalablement traités par la S1. Ceci conduit à un plasmide de 2049 paires de bases ne comportant plus de site BamHI et portant le gène 0-lactamase fonctionnel (conférant la résistance à l'ampicilline) et comportant, en outre, une origine de réplication active dans E. coli et un site de restriction unique HindIII. Cette construction a été appelée pTG1H. 3) Le fragment Hin-J de l'ADN de WVV portant le gène TK a préalablement été cloné dans un vecteur provenant de pBR327 (Drillien et Spehner, 1983). Ce fragment de 4,6 kb a été recloné dans le site HindIII de pTG1H. Un clone a été sélectionné dans lequel le gène TK est situé distalement par rapport au gène codant pour la résistance à l'ampicilline. Cette construction pTG1H a été utilisée comme porteur dans l'expérience suivante. L'étape suivante a été d'isoler un promoteur de W utilisable pour commander l'expression de la séquence codant pour IFN-y humain. Le promoteur d'un gène précoce codant pour une protéine de 7500 daltons (7,5 k) a déjà été utilisé avec succès dans un but identique (Smith et coll., 1983) et on a donc procédé à l'isolement de ce segment. Le gène 7,5 k est situé sur l'un des plus petits fragments SalI (fragment Sal-S) du génome de W type WR (Venkatasan et coll., 1981). Comme les petits fragments sont clones de façon préférentielle, une grande proportion des clones obtenus par clonage direct de l'ADN de W type WR coupé par SalI dans le plasmide pBR322 porte le fragment Sal-S. Ce fragment est inséré dans le bactério- phage vecteur M13mp701 (Kieny et coll., 1983) par digestion SalI et religation, ce qui donne le phage M13TGSal-S. Dans ce clone, un site ScaI se trouve immédiatement à proximité de l'ATG d'initiation du gène 7,5 K. En aval du gène 7,5 K se trouvent situés des sites uniques BamHI et EcoRI provenant du vecteur. Les sites BamHI et ScaI sont fusionnés par l'intermédiaire d'un linker BglII '-CAGATCTG-3' après avoir complété les extrémités générées par digestion BamHI avec le fragment Klenow de la poly- mérase. Ce procédé élimine le site ScaI mais reconstitue le site BamHI et déplace le site unique EcoRI en aval. En même temps, le site SalI (AccI) en aval est éliminé, le site en amont devient donc unique. Cette construction est appelée M13TG7,5K 4) A l'intérieur du fragment HinJ de l'ADN de WV se trouvent situés des. sites ClaI et EcoRI qui sont séparés par environ 30 paires de bases (Weir et Moss, 1983). Le fragment promoteur de 7,5 K présent dans M13TG7,5K est excisépar AccI et EcoRI et cloné entre les sites ClaI et EcoRI de pTG1H-TK pour générer pTG1H-TK-P7, 5K dont la synthèse est schématisée dans la figure 4. Cette construction conduit au transfert des sites BamHI et EcoRI uniques du vecteur M13 immédiatement en aval de la séquence du promoteur 7,5K. Ces sites uniques BamHI et EcoRI sont utilisés dans la construction suivante. ) Le segment polylinker du bactériophage M13TG131 (Kieny et coll., 1984) est excisé par EcoRI et BglII et inséré entre les sites EcoRI et BamHI du plasmide pTG1H-TK-P7,5K générant pTG186-POLY. Dans cette cons- truction, 10 sites de restriction sont disponibles pour le clonage d'un gène étranger sous le contrôle de P7,5K. 6) pTG186-POLY est mis en digestion avec BamHI et EcoRI et ligué avec le fragment BglII-EcoRI venant du M13pTG05 et contenant la séquence de cADN IFN-y (figure 5). Après transformation de E. coli, les plasmides recombinants sont vérifiés par digestion enzymatique de minipréparations d'ADN plasmidique. Un candidat correct a été retenu et appelé pVVTG41. 7) Clonage dans le virus de la vaccine (figure 6) La stratégie décrite par Smith et coll. (1983) repose sur l'échange in vivo entre un plasmide portant un insert dans le gène W TK et le génome viral de type sauvage de façon à inactiver le gène TK porté par le virus. Les virus TK peuvent être sélectionnés par étalement sur un lignée cellulaire (TK-négative) en présence de 5. 5-bromodéoxyuridine (5BUDR) (Mackett et coll., 1982). La thymidine kinase phosphoryle le 5BUDR en 5'-monophosphate, qui est ensuite converti en triphosphate. Ce composé est un analogue de dTTP et son incorporation dans l'ADN bloque le développement correct du virus. Un virus TK- peut néanmoins répliquer son ADN normalement et il conduit à des plaques virales visibles dans une lignée cellulaire également TKi. Le virus de la vaccine se propage dans le cyto- plasme des cellules infectées plutôt que dans leur noyau. C'est pourquoi il n'est pas possible de tirer avantage de la machinerie de réplication et de transcription de l'ADN de l'hôte et il est nécessaire que le virion possède les composants pour l'expression de son génome. L'ADN de WVV purifié est non-infectieux. Afin de générer les recombinants, il est nécessaire d'effectuer simultanément l'infection cellulaire avec lu virioi W et une transfection avec le segment d'ADN cloné qui présente de l'intérêt. Toutefois, la génération des recombinants est limitée à la petite proportion des cellules qui sont compétentes pour la transfection par l'ADN. C'est pour cette raison qu'il a été nécessaire de mettre en oeuvre une stratégie de "congruence" indirecte pour réduire le bruit de fond des virus parentaux non-recombinants. Ceci a été effectué en utilisant comme virus infectieux vivant un mutant thermosensible (ts) de la vaccine qui n'est pas capable de se propager à une température non permissive de 39,5 C (Drillien et Spehner, 1983). Lorsque les cellules sont infectées avec un mutant ts dans des conditions non permissives et transfectées avec l'ADN d'un virus de type sauvage, la multiplication virale interviendra seulement dans les cellules qui sont compétentes pour la transfection et dans lesquelles une recombinaison entre l'ADN viral sauvage et le génome du virus ts aura eu lieu; aucun virus ne se multipliera dans les autres cellules, en dépit du fait qu'elles ont été infectées. Si un plasmide recombinant contenant un fragment de l'ADN de vaccine tel que pVVTG41 est inclus dans le mélange de transfection,à la concentration appropriée,avec l'ADN du type sauvage, il est également possible d'obtenir qu'il participe à la recombinaison homologue avec l'ADN de la vaccine dans les cellules compétentes. Des monocouches de cellules primaires de fibroblastes d'embryons de poulets (CEF) sont infectées à 33 C avec VV-Copenhague ts7 (0,1 pfu/cellule) et transfectées avec un coprécipité au phosphate de calcium de l'ADN du virus de type sauvage VV-Copenhague (50 ng/106 cellules) et le plasmide recombinant (25-30 ng/10 cellules). Après incubation pendant 2 heures à une température qui ne permet pas le développement du virus ts (39,5 C), les cellules sont incubées de nouveau pendant 48 heures à + 39,5 C. Des dilutions de virus ts sont utilisées pour réinfecter une monocouche de cellules de souris L-TK à 37 C qui sont ensuite incubées en présence de 5BUDR (100 gg/ml). Différentes plaques de virus TK sont obtenues à partir de ces cellules qui ont reçu le plasmide recombi- nant, tandis que les cultures contrôles sans plasmide ne montrent pas de plaques visibles. Les virus TK sont ensuite sous-clonés par une deuxième sélection en présence de 5BUDR. Une double recombinaison réciproque correcte entre le plasmide hybride IFN-y/vaccine et le génome de WVV aboutit à l'échange du gène TK portant l'insert avec le gène TK du virus, les recombinants devenant ainsi TK. Les ADN purifiés à partir des différents virus recombinants TK sont digérés simultanément par PstI et EcoRI et soumis à une électrophorèse sur gel d'agarose. Les fragments d'ADN sont transférés sur un filtre de nitrocellulose selon la technique décrite par Southern (1975). Le filtre est ensuite hybridé avec une sonde cADN (IFN-y), nick-translaté au 3 P. Après lavage du filtre, ce dernier est fluorographié et une bande de 1,0 kb est visible sur l'autoradiographie quand le virus vaccine a incorporé le gène IFN-y (figure 7). Expression de l'interféron-y humain après infection des cellules de mammifères avec un virus de la vaccine recombinant Un virus TK recombinant pVVTG41 ayant intégré le gène IFN-y est utilisé pour infecter différentes espèces de cellules en culture. Les lignées humaines (Chang, HeLa),murine (LM), de hamster (BHK), canine (MDCK), de singe (Vero) ou des cellules primaires de poulet sont testées. Toutes ces lignées peuvent produire des quantités d'interféron-y humain voisines. Un protocole type ainsi que les résultats obtenus sont décrits ici pour la lignée Vero. Infection des cellules Vero par la vaccine Des monocouches de cellules Vero (80 % à 100 % confluentes) sont infectées par le virus à différentes multiplicits d'infection (MOI entre10 et 10-5 pfucell.) multiplicités d'infection (MOI entre 10 et 10 pfu/cell.) en milieu dépourvu de sérum. Apres adsorption pendant 1 heure à température aimbiante, le virus est dilué par du milieu et l'infection poursuivie en étuve à 37 C. Apres différents temps d'infection (3 heures à 72 heures) les surnageants sont congelés et les cellules, après 2 lavages successifs, sont grattées et congelées en milieu + BSA (0, 1 mg/ml). Parallèlement, les virus (sauvage ou recombinant) sont titrés par coloration au rouge neutre des plages de lyse observées aux différentes multiplicités d'infection. Titration de l'interféron produit Pour que les virus de la vaccine présents dans les extraits n'interfèrent pas dans la titration, les extraits sont soit traités pendant un temps suffisant aux ultra- violets pour inactiver plus de 99 % du virus; soit clarifiés par centrifugation pendant 2 heures à 30000 rpm et 40C (condition suffisante pour culotter plus de 99,9 % du virus et récupérer plus de 95 % de l'interféron présent). Les surnageants ne subissent pas d'autres manipu- lations. Les extraits cellulaires sont obtenus après éclatement des cellules par trois cong6lations/décongélations successives, suivies d'un traitement court aux ultrasons, puis clarification par centrifugation (10' à 10000 rpm et 4 C). L'activité interféron, présente dans les surnageants ou les cellules ainsi traitées, est titrée par la mesure de son effet d'inhibition sur la réplication du VSV (virus de la stomatite vésiculaire) dans les cellules WISH (cellules épithéliales humaines). Des monocouches confluentes de WISH sont incubées en présence de dilutions sérielles des extraits à tester et d'un interféron étalon (interféron naturel obtenu à partir de lymphocytes stimulés à la PHA) pendant 24 heures à 37 C. Les milieux sont alors éliminés et les cellules infectées par du VSV à 0,1 MOI en milieu appauvri en sérum. Après 24 heures à 30 heures d'incubation à 37 C, temps nécessaire et suffisant à la lyse complète dans les cultures témoins, la dilution qui donne la demi- protection contre la lyse dans les extraits est comparée à celle observée avec l'interféron étalon du laboratoire. Cet étalon interne est titré par rapport à l'étalon international (NIH G9 23-901-530), IFN-y humain naturel, obtenu du "National Institute of Allergy and Infectious Diseases" (Bethesda, USA), pour lequel la demiprotection est observée à 1 U/ml. Les résultats sont exprimés en unités internationales. Lors des immunotests, des dilutions sérielles d'anticorps anti-IFN-y (anticorps monoclonal de souris préparé contre l'interféron-y humain cloné dans les bacté- ries), sont préincubées pendant 2 heures à 370C en présence d'une quantité constante d'extrait correspondant à 10 U/ml d'interféron, avant d'être rajoutées aux cellules. Les tests de spécificité d'espèce sur lignée bovine (MDBK) ou murine (LM) se font également par infection au VSV, avec comme témoin, soit de l'interféron-c humain cloné dans les bactéries, soit de l'interféron-y murin naturel partiellement purifié. Pour tester la sensibilité à pH acide de l'interféron, les extraits sont ajustés à pH = 2 avec de l'HCl 1 M, incubés 2 heures à 4 C puis neutralisés par addition de NaOH 1 M avant d'être titrés. Résultats Les résultats obtenus sur la lignée Vero sont résumés dans les tableaux I, II et III et dans la figure 8. Ils indiquent que la cinétique d'accumulation extracellulaire de l'interféron-y est fonction de la multiplicité d'infection du virus recombinant (tableau I): TABLEAU I ETUDE CINETIQUE DE SECRETION D'INTERFERON-y PAR LES CELLULES VERO EN FONCTION DE LA MULTI- PLICITE D'INFECTION (MOI) DU VIRUS RECOMBINANT Temps après infection MOI 20 heures 30 heures 48 heures U/10 6cell. %/max U/106cell. %/max U/106cell. %/max 4 4 4 1,9 10 55 3,4 104. 100 3,5 10 100 1 8,7 103 25 2,7 104 70 3,6 104 102 0,1 5 103 15 1,7 104 50 2,8 10 80 102 2 103 6 ND ND 5 10 14 _3 1,7 10 0,5 ND ND 1,5 10 4,5 -4 2 2 0,35 10 0,1 ND ND 9 10 2,6 10-5 0,35 102 0,1 ND ND 1,75 102 0,5 ND = non déterminé A faible MOI ( détecté même 48 heures après infection. Pour des MOI. 10 2, la quantité d'interféron extracellulaire est fonction du temps d'incubation; la quantité maximale obtenue avec la lignée Vero (3,5 104 U/106 cell.) est obtenue dès 25 heures à 10 MOI alors qu'elle ne l'est pas avant 48 heures à 1 MOI. En se plaçant à une MOI moyenne (3 10), on peut également visualiser ies processus successifs de synthèse intracellulaire de l'interféron, puis de libération dans le milieu extracellulaire (figure 8). Après 48 heures d'infection, 10 à 30 % de l'interféron produit reste intracellulaire et ce quelle que soit la MOI. On vérifie que l'interféron synthétisé par la lignée Vero infectée par le virus vaccine recombinant présente les propriétés spécifiques d'un interféron-y humain: Spécificité d'espèce vis-à-vis d'une lignée cellulaire humaine, c'est-à-dire aucune activité anti- virale sur lignée bovine ou murine (tableau II). - Sensibilité à la température, à l'acidité et aux détergents (tableau III). - Neutralisation par un anticorps spécifiquement dirigé contre l'interféron-y humain (tableau II). TABLEAU II CARACTERISATION DE L'INTERFERON PRODUIT DANS LES CELLULES VERO INFECTEES PAR LE VIRUS RECOMBINANT VACCINE IFN-y Surnageant de IFNy huma hu main y humainIFNa humain _uinIFNy humain Critère cellules Vero IFNy humain standard clon dan s cloné dans infectées par standard NIH ntr E d E o l --u interne E. coli E. coli Titration sur le virusan cellules humaines reobnn (U.ml1) 10 4 103 5 102 104 7 103 Titration sur 3 cellules bovines TABLEAU III STABILITE DE L'INTERFERON PRODUIT DANS LES CELLULES VERO INFECTEES PAR LE VIRUS RECOMBINANT VACCINE IFM Surnageant de IFN-y humain IFN-y humain IFN-a huma Traitement cellules vero standard cloné dans cloné dar infectées par interne E. coli E. colJ le virus recombinant contrôle 100 100 100 100 pH:2 2ha42 C SDS 0,1 % 2h à 40C 56 C, lh 1,2 au contrôle. Conclusion Toutes les lignées testées se sont révélées capables de synthétiser l'interféron-y humain après infection par un virus de la vaccine recombinant. On a pu vérifier que sur ces lignées, y compris les lignées humaines, l'interféron-y humain produit avait un effet négligeable sur la réplication de la vaccine, dans les conditions d'infection utilisées. Les titres maximum obtenus sur ces différentes lignéeE se situent entre 2 104 et 7 104 unités d'interféron-y humain pour 10 cellules infectées; ce facteur 3 semble refléter des sensibilités légèrement différentes des lignées au virus de la vaccine. En prenant en compte une activité spécifique décrite pour l'interféron naturel de 108 U/mg, ces résultats indiquent que l'on peut attendre une production maximale de 0,2 à 0,7 pg pour 106 cellules infectées, soit environ 0,2 à 0,7 mg d'interféron purifié par litre de culture. Leplasmide pVVTG41 a été déposé le 12 juin 1985 à la Collection Nationale de Cultures de Microorganismes de l'Institut Pasteur, 28 rue du Docteur- Roux - 75015 PARIS, sous le numéro suivant: 10. E. coli souche 5K pVVTG41: n I-456. La description de ce plasmide est la suivante: Plasmide de réplication de E. coli portant un cADN de l'interféron y humain (IFN-y) placé sous le contrôle d'un promoteur du virus de la vaccine et destiné à la recombinai- son in vivo, dans les cellules de mammifères, avec le virus de la vaccine, pour engendrer un virus recombinant vaccine TK-IFN-y, capable d'exprimer l'IFN-y dans des cellules de mammifères. - le cADN de 1'IFN-y a été isolé d'une banque provenant d'ARN messager de lymphocytes stimulés par un agent mitogène. - Ce cADN a été placé sous le contrôle d'un promoteur du virus de la vaccine, le promoteur de la protéine 7,5 k. - La séquence d'ADN P 7,5k-IFN-y a été intégrée dans le gène TK de la vaccine pour favoriser une recombinaison homologue avec le gène TK du virus de la vaccine de type sauvage qui sera utilisé pour infecter les cellules de mammifères. - La séquence d'ADN comprenant P7,5K-IFN-y intégrée dans le gène TK a été insérée dans un plasmide de E. coli dérivé du pML2 et comprenant une origine de-réplication dans E. coli et le gène de la e-lactamase. Cette construction s'appelle pVVTG41. L'ADN du plasmide pVVTG41 sera utilisé sous forme de précipité de phosphate de calcium pour transfecter des cellules de mammifères infectées par le virus de la vaccine et obtenir ainsi, au cours de la multiplication virale dans la cellule, une recombinaison entre le gène TK du virus et le gène TK contenant le gène IFN-y, porté par le plasmide. Le virus recombinant résultant de cet échange sera TK et portera le gène de l'IFN-y. 21 2583429 REFERENCES 1. Drillien R. & Spehner D. (1983) Virology 131, 385-393. 2. Blalock J.E., Georgiades J.A., Longford M.P. & Johnson H.M. (1980) Cell Immunol. 49, 390-394. 3. Glasgow L.A., Crane J.L., Jern E.R. & Younger J.S. (1978) Cancer Treat. Rep. 62, 1881-1888. 4. Gray P.W., Yeung D.W., Pennica D., Yelverton E., Najatian R., Simonsen C.C., Derynck R., Sherwood P.J., Wallace D.M., Berger S.L., Levinson A.D. & Goeddel D.V. (1982) Nature (London) 295, 503-508. 5. Isaacs A., Linderimann J. (1957) Proc. Royal Soc. 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Virol. 46, 530-537. 23 2583429 REVENDICATIONS 1) Poxvirus caractérisé en ce qu'il comporte tout ou partie d'une séquence d'ADN codant pour IFN-y. 2) Poxvirus selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il s'agit du virus de la vaccine. -3) Virus selon la revendication 2, caractérisé en ce que la séquence d'ADN codant pour IFN-y est la séquence d'ADN codant pour la protéine complète. 4) Virus selon l'une des revendications 1 à 3, caractérisé en ce que la séquence d'ADN codant pour IFN-y est sous la dépendance d'un promoteur d'un gène du poxvirus ) Virus selon la revendication 4, caractérisé en ce que le promoteur est un promoteur du gène de la vaccine. 6) Virus selon la revendication 5, caractérisé en ce que la séquence d'ADN codant pour IFN-y est sous le contrôle du promoteur du gène de la protéine 7,5K de la vaccine. 7) Virus selon l'une des revendications 1 à 6, caractérisé en ce que la séquence codant pour IFN-y est clonée dans le gène TK de la vaccine. 8) Virus recombinant pVVTG41. 9) Cellule de mammifères infectée par un virus selon l'une des revendications 1 à 8. ) Procédé de préparation d'IFN-y, caractérisé en ce qu'on cultive des cellules selon la revendication 9 et que l'on récupère la protéine formée. 11) IFN-y obtenu par la mise en oeuvre du procédé selon la revendication 10. 12) IFN-y obtenu à partir de culture cellulaire, caractérisé en ce qu'il est sous forme mature et glycosylée. 24 2583429 13) Composition thérapeutique, caractérisée en ce qu'elle comporte l'IFNy selon la revendication 11 ou 12. 14) Composition thérapeutique, caractérisée en ce qu'elle comporte un virus selon l'une des revendica- tions 1 à 8. ) Composition selon la revendication 14, caractérisée en ce qu'elle est sous forme inoculable.