FR 2580666 A1 19861024 FR 8505939 A 19850419 La présente invention concerne un nouveau mode perfectionné d'immobilisation d'enzymes sur supports soli- des. Elle comprend le procédé d'immobilisation, ainsi que les enzymes immobilisées obtenues. L'immobilisation des enzymes, c'est-à-dire leur fixation sur un support solide, éventuellement plastique, a constitué un progrès important dans cette branche de la technique. Elle a apporté une amélioration considérable, en ce qu'elle a permis de réutiliser de nombreuses fois une. enzyme qui, autrement, à l'état libre, était pratiquement perdue d'une opération à l'autre. En outre, le travail avec une enzyme ainsi immobilisée contribue à la pureté du mi- lieu traité. Cependant, la fixation des enzymes sur des supports solides,que ce soit par adsorption ou par liai- sons covalentes, est une opération assez délicate, nécessi- tant un choix bien étudié des matières. L'immobilisation par liaisons covalentes conduit à des systèmes plus stables, évitant des pertes d'enzymes pendant leur utilisation. Mais le système enzymatique, obtenu par cette dernière méthode, présente généralement une activité plus faible que l'enzyme libre, seule, à cause de l'encombrement stérique; en effet, la fixation d'une macromolécule protéique sur un support rigide réduit l'accessibilité du substrat à traiter aux sites actifs de la macromolécule. On sait par exemple que la ribonucléase immobilisée sur agarose subit une baisse d'activité de l'ordre de 10 à 75% par rapport à l'enzyme libre, selon la nature du substrat traité. Pour remédier à ce défaut on peut utiliser un "bras de support", c'est- à-dire un réactif intermédiaire, combiné d'une part au support et de l'autre à l'enzyme. Toutefois, même avec les systèmes connus de ce genre, l'activité enzymatique est gé- néralement inférieure à celle de l'enzyme libre. D'autre part, le choix d'agents pouvant jouer le rôle de "bras" est assez restreint, car beaucoup de réactifs éventuels altèrent l'activité de l'enzyme, ou bien les conditions opé- ratoires qu'ils impliquent ne sont pas compatibles avec la conservation de l'actlvité catalytique. Les agents les plus couramment utilisés à l'heure actuelle sont tels que le glutaraldéhyde, bromure de cyanogène et quelques autres rappelés ci-dessous. Groupe fonctionnel enzym support Méthode d'activation enzyme support -NH2 -NH2 glutaraldéhyde -NH2 -COOH azoture d'acyle carbodiimide -NH2 -OH bromure de cyanogène triazines - COOH -NH2 carbodiimide *4' OH @ NU sel de diazonitum -SE -SH pont disulfure Or la plupart de ces agents sont d'une application délica- te et comportent les inconvénients mentionnés plus haut. La présente invention apporte à la technique de l'immobilisation des enzymes un progrès marqué: elle uti- lise un nouvel agent, servant de "bras de support", dont l'application est plus aisée et plus sûre que celle des agents connus, indiqués plus haut; d'autre part, elle apporte l'important avantage de procurer un rendement élevé en activité de l'enzyme, après l'immobilisation de celle-ci. Les systèmes enzymatiques, formés suivant l'invention, sont très stables et faciles à stocker à des températures norma- les. Le procédé d'immobilisation d'enzyme par liaisons covalentes, suivant la présente invention, qui utilise un support comportant des groupes NH2 et un agent intermédiai- re se fixant, à la fois par ces groupes NH2 sur le support, ainsi que sur l'enzyme, est caractérisé en ce que l'agent intermédiaire, ou "bras de support", est constitué par un ester bis-dithiolque, dont les deux fonctions ester se ter- minent chacune par un groupe nucléofuge. Autrement dit, les agents d'activation du support et de l'enzyme sont des bis-dithioesters porteurs de 2 ato- mes ou groupes nucléofuges susceptibles de réagir avec des groupes NH2 du support et de l'enzyme. L'invention résulte de la constatation surpre- nante que la présence des groupes dithiolques facilite gran- dement la fixation de ces bis-dithioesters tant sur des supports que sur des enzymes, sans nécessiter une activa- tion spéciale comme c'est le cas des agents de la techni- que connue, en particulier de diacides ou leurs anhydrides. Le réactif, suivant l'invention, peut être repré- senté par la formule: X-R'-S-C-R-C-S-R'-X Il lI S S (1) o R est une chaîne ou cycle hydrocarboné, à nombre d'ato- mes de C variable, mais de préférence 1 à 20; il en est de même des groupes R'; quant à X il désigne un atome ou groupe pouvant favoriser la réaction avec -NH ou -NH2, tel que par exemple un halogène, carboxyle, sulfinique, sul- fonique, phosphoreux, phosphoneux, phosphorique, phosphoni- que, H actif, SH, amide, hydroxy, etc.; lorsque R est une chaîne aliphatique, celle-ci peut être saturée ou non sa- turée et comprend le plus souvent 2 à 18 atomes de carbone et plus particulièrement 6 à 12. Cette chaîne peut porter des substituants, notamment des groupes aryliques, alkyli- ques éthers ou/et halogènes. Comme R peut être un groupe cyclique, il peut être constitué par des cycloalcanes, cy- cloalcènes, ou/et aryles à 1 ou 2 noyaux, mais surtout en C5 à C12, en particulier phényle, alkylphényles, diphényle, ou de tels cycles porteurs des substituants. Un groupe X de choix, pour la réalisation de l'invention, est le groupement carboxylique COOH qui permet de faire réagir le "bras" avec le support et l'enzyme dans des conditions suffisamment douces et pourtant efficacement. Voici, à titre d'exemples non limitatifs, quel- ques uns des bis (dithio-esters de carboxy-alkyles) ou tétrathioalcane dithioates de carboxyalkyles. HOOC-CH2-S-C-CH2-C-S-CH2COOH I S S HOOC-CH2S-C-(CH2) -C-S-CH2COOH S S HOOC-CH2CH2CH2-S- -(CH2)3-C-S-CH2CH2CH2COOH S S I:V HOOC-CH2CH2-S-C-(CH2) 0-C-S-CH2CH2COOH S S HOOC-(CH2)6-S-C-CH2CH2-C-S-(CH2)6COOH S S HOOC-CH2 -S-C-(CH2)12-C-S-CH2-COOH VI 2 l S S VI0 HOOC-CH2CH2-S-C --C-S-CH2CH2-COOH VII S S CH2 CH2 VIII HOOC--(CH2) 3-S-C HC- CH-C-S-(CH2)3-COOH S CH2' CH2 S IHOOC-CH2-S-C-CH2 - CH2-C-S-CH2-COOH S R" S X HOOC-CH2-S-C-CH2CH2-O-CH2CH -C-CH 2-COOH S S XI HOOC-CH2CH-CH2-SC-(CH2)8-CS-CH2CHCH2-COOH Cl S S Cl Dans le composé IX R" peut être absent ou bien formé par un substituant tel qu'halogène, nitro, alkyl, alkoxy, etc. Il peut d'ailleurs y avoir plusieurs de tels substituants R". Parmi les autres esters dithiolques, pouvant être utili- sées pour l'immobilisation d'enzymes, on peut citer les formules typiques suivantes: XII H2NOC-CH2-s-c-(CH2) 8-C-S-CH2CONH2 sl s S S. Cl3CCH2-S-C-(CH2 4-C-SCH2CCI3 XIII3 2 il 24l 2 3 S s XIV HO2S-(CH2)4-S-C(Ph) -C-S-(CH2> 4-So2H lI s S XV HO 3S-CH2-S-C- (CH2) 10-C-S-CH2 SO3H S S HOCH2CH2_SC_ (CH2) 6-C-S-CH2CH2OH XVI 2H2 il-C- S S o S-C-(CH)-C-9--o XVII SS R"' R -S-C-(CH2CH2CH2 oC -C-S-. t XV I I- - 2 2' R'".,_..R '" (CH3) 2N-CH2CH2-S-C(CH2) 3-C-S-CH2CH2-N (CH3)2 XIX 32 22 Y 23X S S XX HS(CH2)3-S-C-(CH2)3-C-S- (CH2)3-SH S S Ces différents composés peuvent être préparés à l'aide des méthodes comme celles de LEVESSON (Act. Chem. Scand. part B, 29. 539, 1975), de MARVEL et col. (J. Am. Chem. Soc. 77, 5997-1955) ou/et de GRESSIER et LEVESQUE (Europ. Poly- mer.16, 1093-1980). D'après ce qui précède, on voit que l'invention permet de choisir, pour l'agent de fixation, un dithio- ester formant une chaîne plus ou moins longue: on peut ainsi se servir d'un "bras" aussi long qu'il le faut pour réduire ou supprimer l'empêchement stérique lors de l'ac- tion de l'enzyme immobilisée sur un substrat donné. En ou- tre, les propriétés de l'agent de fixation peuvent être mo- difiées selon les applications envisagées: cela peut se faire par le choix approprié des groupes R, R', R", R"'et X. Ainsi, par exemple, un noyau aromatique en R procure de la rigidité au bras support; une chaXne aliphatique appor- te la souplesse; des groupes alkoxy, tels que -(CH2CH2O)n et similaires, conduisent à une hydrophilie plus ou moins prononcée, tandis que des longues chaînes de CH2 ou d'aryles, tels que diphényle, tendent à l'hydrophobie. On peut aussi moduler l'activité nucléofuge de l'ester di- thioique rendant celui-ci compatible avec la fragilité de l'enzyme donnée. Le nouvel agent intermédiaire, suivant-l'inven- tion, peut être combiné d'abord avec le support ou bien avec l'enzyme, sans que celui-ci subisse une dénaturation. Les supports,pouvant être employés, sont en prin- cipe tous ceux qui sont susceptibles de fixer, d'une maniè- re ou d'une autre, des groupes NH2, ou bien ceux dont la composition comprend déjà des NH2 disponibles pour la ré- action avec l'agent dithioique. Ainsi peut-on employer des matières comme silice, divers silicates, entre autres zéo- lithes, verre, alumino-silicate, bentonite, ainsi que des alumines et charbons actifs traités de manière appropriée par une amine. De même conviennent des celluloses et leurs dérivés, notamment celluloses aminées, chitosane et sur- tout des protéines suffisamment rigides porteuses de grou- pes NH ou NH2, susceptibles de réagir avec les groupes X de l'agent suivant l'invention. Dans cette dernière caté- gorie, il est possible de choisir le support adéquat parmi des matières telles que par exemple caséine, lactoglobuli- ne, ovalbumine, sérum albumine, etc., éventuellement dur- cies par chauffage ou chimiquement. Une autre classe de supports fort intéressants sont des polymères synthétiques portant des NH2 libres ou partiellement combinés, comme en particulier polyaminopolystyrène, polyacrylamide, polyacry- lates aminés, polyméthacrylate(ou polyacrylate) de glyci- dyle aminé par ouverture des ponts époxy, sous l'effet d'une amine ou de l'ammoniac (FR 2 442 244). En ce qui concerne les enzymes et coenzymes jus- ticiables du procédé de l'invention, elles appartiennent d'une façon générale à tous les groupes, c'est-à-dire aux hydrolases, notamment protéases, carbohydrases et estéra- ses, de même qu'aux oxydases, déshydrogénases, aux enzymes d'isomérisation et celles de polymérisation, etc. On peut ainsi immobiliser avec l'aide de dithioesters suivant l'in- vention, les amylases, l'arginase, la dipeptidase, l'éno- lase, l'aldolase, l'adénosine, désaminase, les lipases, les catalases, peroxydases, la glucose oxydase, galactose oxy- dasé, lactates oxydases, oxalate oxydase, pyruvate oxydase, nucléase, ribonucléase, lysozyme, trypsine, chymotrypsine, présure, invertase, maltase, pectinase, alcool déshydrogéna- ses, lactate déshydrogénase, formiate déshydrogénase, glu- cose déshydrogénase etc. L'immobilisation, suivant l'invention, des enzy- mes peut être réalisée par simple contact, à une température fraîche, le plus souvent entre 0 et 30 C, et surtout en- tre 0 et 10 C, de l'enzyme voulue avec le support activé par le dithioester, au sein d'un tampon de pH convenant à l'enzyme. L'activation préalable du support s'opère géné- ralement par le maintien de ce support dans une solution de dithioester dans un solvant de celui-ci. Selon l'af- finité du dithioester pour les groupes -NH2 du support, cette opération a lieu à froid ou à chaud, généralement entre 0 et 100 C, le plus souvent à la température am- biante ou entre 10 et 35 C. Lorsque le support ne comprend pas naturellement des -NH2 ou des -NH-, il est traité - avant l'activation - par une amine. Dans ce cas, qui est par exemple celui de la silice ou de silicates, le support solide subit deux traitements successifs: d'abord celui de l'amination, sui- vi de la séparation du réactif aminé et du séchage du sup- port; ensuite contact de ce dernier avec une solution, généralement organique, de dithioester. En ce qui concerne l'activation préalable de l'enzyme, elle porte principalement sur la modification "douce" des rési- dus lysine présents à la surface externe de la protéine. En général, le greffage du bis-dithioester sur l'enzyme a lieu dans un milieu tamponné à un pH égal ou voisin de la neutralité. Cependant, lorsque l'enzyme sup- porte sans inconvénient un pH légèrement basique, il y a intérêt à opérer dans un tel milieu. On accélère ainsi la réaction de greffage par catalyse due aux ions OH-. Aussi, une des formes d'exécution avantageuse de l'inven- tion comprend-elle l'opération au sein d'un tampon de pH 7 à 9, de préférence entre pH 8 et 9. Après la fixation d'une enzyme sur le support par l'intermédiaire de bisdithioester, il reste le plus souvent une certaine proportion de groupes dithioiques qui n'a pas réagi; il est alors indiqué de les désactiver. Pour cela, il convient, suivant l'invention, de faire ré- agir sur ces groupes des petites molécules du type H2N-R-Y o R est un groupe hydrocarboné aliphatique ou a- rylique de faible masse moléculaire, de préférence en C1 à C8, et Y un groupe fonctionnel choisi selon les proprié- tés qu'il s'agit de conférer à l'environnement de l'enzy- me; Y peut être, par exemple, -COOH, -CH20H, -CH3 ou autre, non nocif à l'activité de l'enzyme. Un mode de mise en oeuvre du procédé de l'inven- tion consiste àfaire d'abord l'activation des fonctions aminées portées par l'enzyme, au moyen d'un bis dithio ester, avant sa mise en contact avec le polymère aminé. Dans ce cas on optimalise au préalable la quantité de réactif nécessaire et suffisante à cette activation, pour éviter un excès de bis dithio ester. Cette façon d'opérer est avanta- geuse dans le cas de certains supports aminés solubles, en évitant la réticulation qui pourrait se produire lors de l'activation directe de ces derniers. Un exemple particulier, avantageux, du procédé d'immobilisation, suivant l'invention, consiste à traiter un gel de silice poreuse, purifiée,par une solution d'un silane dans un solvant approprié; le silane peut être un alkyl-silane, un alkyl-halogèno silane, et de préférence un alkyl- amino silane. Dans le cas o l'on n'a pas utilisé un amino-silane, le produit peut être traité par une amine ou par de l'ammoniac, après quoi le solide est séparé, lavé et séché. La silice, ainsi préactivée, est mise en suspen- sion dans une solution organique d'un dithioester suivant l'invention; le solvant peut être par exemple un alcool, une cétone, etc. ou un mélange de solvants. Le plus souvent 0,1 à 10 -6, et surtout 10 -2 à 10-5, mole de dithioester sont employées par gramme de support sec; cette quantité est déterminée à partir de la teneur en groupes -NH2 du support, 1 mole de di-thioester étant employée en principe par grou- pe NH2 présent. 258066i Après le temps requis, compris en général entre 6 et 60 heures, le support est séparé du solvant, rincé avec celui-ci, puis à l'eau distillée, et est suspendu dans une solution tampon de pH convenant à l'enzyme que l'on en- visage de fixer; cette suspension peut d'ailleurs être conservée longtemps jusqu'à son utilisation. Pour effectuer l'immobilisation, on introduit l'enzyme voulue dans la suspension du support au sein du tampon de pH; le tout est laissé au repos, en général pendant 4 à 40 heures, et le plus souvent 10 à 30 heures, à la température indiquée plus haut, de préférence vers 4 à 80C. Ensuite le support est séparé par filtration ou centrifu- gation, lavé avec une solution aqueuse d'électrolyte, puis avec un tampon de pH approprié. Il est alors prêt à l'em- ploi, mais peut également être conservé dans la solution tampon choisie. Etant donné que les bis-dithioesters décrits con- viennent à la fixation d'enzymes sur des supports plasti- ques ou pâteux, dont plusieurs exemples sont cites plus haut, ils conviennent bien à la préparation de membranes ou capteurs enzymatiques. Dans cette application la mem- brane peut être, par exemple, obtenue par co-réticulation d'une enzyme avec un gel de protéine, de cellulose ou d'ester de cellulose aminés, ou bien d'un polymère acry- lique, styrénique ou vinylique, porteurs de groupes NH2 ou NH, à l'aide d'un bis-dithioester suivant la présente invention. L'invention est illustrée par les exemples non limitatifs, qui suivent. EXEMPLE 1 Immobilisation de glucose oxydase sur un support de silice g de silice, connue dans le commerce sous la dénomina- o tion XOB 30D, de diamètre moyen des pores de 650 A et de surface spécifique de 50 m2/g, sont d'abord traités par un mélange sulfo-nitrique 1/1, ensuite bien rincés à l'eau dis- tillée. La silice est alors séchée jusqu'à élimination de toutes traces d'eau, puis elle est traitée pendant 6 heures à la température ambiante avec 300 ml de solution toluéni- que renfermant 15g de triméthoxy propyl amino silane (CH30)3 Si CH2CH2CH2NH2. La silice, ainsi silanée et aminée, est séparée de la solution, puis lavée abondamment au toluè- ne et à l'hexane, pour éliminer le silane en excès. Elle est ensuite séchée. 5g de cette silice aminée, sèche, sont mis en suspension dans 50 ml d'une solution éthanolique de 0,177 g, soit 0,0005 mole (10-2 mole/litre) de tétrathiooctanedioate de carboxyméthyle HOOC-CH2-S-C-(CH2) 6-C-S-CH2-COOH S S *M=354) La suspension, agitée de temps en temps, est laissée à la température ambiante durant 48 heures. La silice est en- suite séparée de la solution, rincée à l'éthanol, puis à l'eau distillée, et introduite dans une solution tampon au phosphate, de pH 7, dans laquelle elle est conservée. lg de silice, ainsi stockée, avec 10 ml de tampon, sont ad- ditionnés de 0,020 g de glucose oxydase (GOD) du type connu sous la désignation II (sigma). On laisse le greffage s'ef- fectuer à une température de 5 à 6 C. Après 24 heures de contact, la silice est séparée par filtration, lavée avec ml d'une solution 1M de NaCl, puis avec 20 à 40 ml d'eau distillée, et enfin rincée avec la solution tampon dans la- * quelle a eu lieu le greffage. Le lavage à NaCl (ou urée M utilisée dans d'autres exemples) avait pour but d'éliminer la fraction d'enzyme GOD retenue seulement par adsorption. Pour mesurer l'activité de la GOD, et ainsi confirmer sa fixation, la silice greffée est mise en contact avec une solution de glucose à 1g/l, et son activité est déterminée par spectrophotométrie. EXEMPLE 2 Détermination de l'activité enzymatique de la glucose oxy- dase immobilisée selon l'exemple 1 On détermine tout d'abord l'activité de la même quantité d'enzyme utilisée pour le greffage, à l'état libre, en solution dans du tampon. Cette activité de la GOD libre est déterminée à une tem- pérature de 34-35 C à l'air libre, sous légère agitation, par simple contact entre l'enzyme et une solution de glu- cose. L'activité de la GOD greffée sur silice est déterminée dans les mêmes conditions opératoires. GOD libre GOD greffée mg GOD, lg de silice greffée 10 ml tampon, avec 20mg de GOD, x ml de solution 10 ml tampon, glucose x ml de solution glucose. L'activité dans un cas comme dans l'autre est suivie par dosages spectrophotométriques, par la méthode à l'hexoki- nase. L'activité de la GOD immobilisée est pratiquement la même que celle de la GOD libre, déterminée dans les mêmes con- ditions. EXEMPLE 3 Activité de l'enzyme immobilisée en fonction du temps Différentes déterminations d'activité enzymati- que ont été effectuées sur plusieurs mois, à partir du mê- me échantillon de glucose oxydase immobilisée sur 1,00g de silice activée avec du tétrathiododécanedioate de car- boxyméthyle greffée avec 20 mg de GOD dans 10 ml de tam- pon pH7. Une solution de (n -D-glucose à 5 g/l était addi- tionnée au temps 0. Au bout d'une minute, on déterminait la quantité de glucose présente dans la suspension, de fa- çon à déduire la proportion de substrat transformé durant ce temps. Après 6 mois de conservation l'activité était inchangée. EXEMPLE 4 Activation préalable de l'enzyme A une solution de glucose oxydase dans le tampon phosphate, telle que définie à l'exemple 1, on ajoute des quantités croissantes de solution de bis dithio esters ci- dessous, à la concentration de 10- 2M: (a) HOOCH2C-S-C-(CH2) 0-C-S-CH2COOH II' S S (b) HOOC-CH2S-C-CH2CH20-CH2CH2-C-SCH2COOH S s Dans chaque cas on suit par spectrophotométrie à 310 nm la disparition de la fonction dithioester pour s'assurer que la réaction a eu lieu avec les groupes NH2 accessibles de la glucose oxydase. On observe une différence de réactivité des deux composés (a) et (b); ramené à la molécule de protéine active pré- sente en solution, on peut estimer à 5 le nombre de fonc- tions amines activées par le composé (a) et à 3,8 par le composé (b). En maintenant pendant 48 heures le contact entre la solution de glucose oxydase et le bis dithio ester (a) on mesure l'ac- tivité de l'enzyme après addition de son substrat et l'on n'observe aucune diminution d'activité par rapport à une solution témoin conservée dans les mêmes conditions, mais en l'absence de bis dithio ester. Cet exemple montre que l'on peut activer en premier lieu indifféremment l'enzyme ou le support aminé, ce qui permet de choisir pour chaque type d'enzyme la démarche la mieux adaptée pour l'obtention d'un rendement optimal. EXEMPLE 5 Immobilisation de l'alcool déshydrogénase g de silice, aminée suivant la méthode décrite à l'exem- ple 1 et activée par du tétra thio octane dioate de carbo- xyméthyle, sont maintenus pendant 48 h en suspension dans ml de tampon phosphate 50 mM pH 7, contenant 100 mg d'alcool déshydrogénase de levure d'activité environ 70 UI/mg. On introduit ainsi un grand excès d'enzyme pour accroître l'activité de la préparation, l'excès d'enzyme en solution peut, après séparation du support activé, être recyclé pour une autre immobilisation. Après 48 heures de contact à 4 C, on sépare la silice qui est rincée successivement par du tampon phosphate, de l'eau distillée, puis du NaCl 1M, et remise en suspension dans du tampon phosphate. On incube alors la suspension de silice greffée à l'alcool déshydrogénase, dans une solution de glycine 0,1 M pH 7,5, afin de désactiver les groupes dithioesters présents sur la silice, qui n'ont pas réagi avec l'enzyme. On lave à nouveau la préparation d'enzyme immobilisée par du tampon phosphate pH 7. Cette préparation présente une activité spécifique 11,3 UI par gramme de silice; cette activité est remarquablement stable, comme le montrent les résultats ci-dessous, obte- nus en cours de la conservation de l'enzyme immobilisée, dans du tampon phosphate de pH 7 à 40C. Age de la préparation Activité spécifique (jours) UI/g silice 1 jour 11,6 jours 10,9 jours 11,4 Revendications 1. Procédé d'immobilisation d'enzymes sur des supports par l'intermédiaire d'un agent susceptible de se combiner à la fois à l'enzyme et au support, caractérisé en ce que cet agent est un bis- dithioester dont la molécule porte, à chacun de ses bouts, un groupe nucléofuge capable de réagir avec une fonction amine. 2. Procédé suivant la revendication 1, caractérisé en ce que le bisdithioester est de la forme X-R'-S-C-R-C-S-R'X Il t S S o R et R' sont des groupes hydrocarbonés, aliphatiques, cycloaliphatiques ou aryliques, pouvant porter des substi- tuants, X étant un groupe ou atome actif capable de réagir avec une fonction amine. 3. Procédé suivant la revendication 2, caractérisé en ce que R est une chaîne aliphatique, de préférence en C2 a C20, pouvant contenir des atomes d'oxygène. 4. Procédé suivant la revendication 2, caractérisé en ce que R est un aryle ou alkaryle dont le noyau peut porter un ou plusieurs substituants, en particulier halo- gènes, nitro, hydroxyles ou alkyleso 5. Procédé suivaEt-- la revendication 2, caractérisé en ce que R est ou renferme un cycloalkyle, en particulier cyclohexyle ou cyclopentyle, pouvant porter un ou plu- sieurs substituants, notamment alkyles, halogènes, mitro ou hydroxyles. 6. Procédé suivant une des revendications 2 à 5, ca- ractérisé en ce que R' est une chaîne -(CH2)n- avec n égal de préférence à 2 à 18, pouvant porter des substituants, en particulier alkyles, hydroxyles, nitro, ou halogènes. 7. Procédé suivant une des revendications 2 à 5, ca- ractérisé en ce que R' est un aryle, oxyaryle ou alkaryle, dont le noyau peut porter des substituants, notamment des halogènes, alkyles, nitro, sulfo, hydroxy, oxy ou thiol. 8. Procédé suivant une des revendications 2 à 7, ca- ractérisé en ce que X est un carboxyle. 9. Procédé suivant une des revendications 2 à 7, ca- ractérisé en ce que X est constitué par un ou plusieurs halogènes, hydroxyles, sulfonyles, sulfinyles, phosphoryles ou autres groupes oxygénés du phosphore, dialkylamino ou mercapto. 10. Application du procédé suivant une des revendica- tions précédentes à la fixation d'hydrolases, d'oxydoréduc- tases, de transférases, de lyases, d'isomérases ou/et de ligases sur des supports solides, plastiques ou pâteux, in- organiques ou organiques, porteurs de groupes amino, en vue de l'utilisation de l'enzyme, ainsi immobilisée, dans un réacteur ou dans une membrane enzymatique. 11. Procédé suivant une des revendications précédentes, caractérisé en ce que l'activation préalable, au moyen d'un bis-dithioester, est appliquée à l'enzyme.