FR 2581393 A2 19861107 FR 8506706 A 19850502 Cellules hybrides Productrices d'un antigène caractéristi- aue du virus de l'hépatite B obtenu à partir d'hépatocytes et de cellules établies de singe, procédé pour l'obtention de ces cellules hybrides et application de celles-ci à la production de l'antigène susdit. L'invention est relative à des hybrides cellulai- res efficaces pour la production d'un polypeptide ayant les propriétés immunologiques et, de préférence aussi, im- munogènes, d'un antigène du virus de l'hépatite B, de pré- férence, d'un antigène de l'enveloppe de ce virus, plus particulièrement de l'antigène HBS Ag ou d'un fragment de celui-ci, ce polypeptide étant codé par une séquence d'ADN cloné ou clonable dans cet hybride cellulaire. L'invention est également relative à un procédé de production de ces hybrides cellulaires et à l'application de ces derniers à la production dudit polypeptide. Les hybrides cellulaires de la présente invention entrent dans le cadre de ceux qui ont déjà été décrits dans le brevet principal. On rappelle que les hybrides cellulaires du brevet principal, qui sont transformés ou transformables par une séquence d'ADN clonée déterminée, sont caractérisés en ce qu'ils contiennent, d'une part, une partie au moins du patrimoine génétique d'une lignée de cellules primaires naturellement favorables à l'ex- pression de gènes naturels codant pour une protéine cons- tituée par le polypeptide codé par la susdite séquence d'ADN clonée ou contenant dans sa structure une séquence polypeptidique identique ou analogue à celle de ce poly- peptide et, d'autre part, un marqueur génétique leur per- mettant de pousser dans un milieu sélectif ou contenant un principe actif normalement léthal pour les cellules dont l'hybride est issu, mais inactivable par le polypeptide exprimé par ledit marqueur génétique. L'expression "cellu- les primaires" telle qu'utilisée dans ce qui précède dési- gne notamment toute cellule prélevée sur un mammifère et connue par sa capacité à être le siège de la production de la protéine ou du polypeptide correspondant à cette pro- téine dont la production est recherchée. Ces cellules pri- maires sont caractérisées par le fait qu'elles ne se mul- tiplient guère in vitro, que leur prolifération est tout au plus limitée à la production de monocouches, le déve- loppement étant ensuite interrompu par "inhibition de con- tact" ou analogue. Ceci étant, ces cellules peuvent tout de même, en tout état de cause, être maintenues un certain temps en survie dans des milieux appropriés. L'expression "cellules eucaryotes établies' dési- gne des cellules eucaryotes, plus particulièrement de mam- mifères qui peuvent être cultivées in vitro et qui sont capables de se multiplier à travers plusieurs générations. Le procédé selon l'invention du brevet principal pour former un hybride cellulaire exprimant ou pouvant être rendu capable d'exprimer une séquence d'ADN clone déterminée était caractérisé: - en ce que l'on réalise une coculture, dans des condi- tions propres à permettre leur hybridation, d'une part, de cellules eucaryotes établies, dans lesquelles la susdite séquence d'ADN clonée est exprimable ou exprimée et, d'au- tre part, de cellules primaires naturellement favorables à l'expression de gènes naturels codant pour une proteine constituée par le polypeptide codé par la susdite séquence d'ADN clonée ou contenant dans sa propre structure une sé- quence polypeptidique identique ou analogue à celle de ce polypeptide, cette coculture étant réalisée dans un milieu qui n'autorise pas le développement desdites cellules éta- blies, lorsqu'elles ne sont pas complémentées par une sé- quence génétique appropriée, - en ce que les cellules primaires mises en jeu dans l'hy- bridation cellulaire sont aptes ou ont été rendues aptes au préalable à fournir ladite séquence génétique appro- priée à au moins une partie des hybrides cellulaires for- més dans ledit milieu de culture et en ce que l'on recueille les hybrides cellulaires formés. L'invention du brevet principal fournit donc des micro-organismes modifiés transformés ou transformables par des séquences d'ADN clonées par la mise en oeuvre des techniques du génie génétique, ces micro- organismes modifiés étant cependant tels que la séquence d'ADN clonée se trouve en fait replacée dans un environnement génétique (intervenant par exemple au niveau de la différenciation ou de la programmation des génomes contenant une séquence d'ADN identique ou équivalente) proche des conditions naturelles qui s'avèrent en général particulièrement favorable à son expression. Le but de la présente invention est de fournir une catégorie d'hybrides cellulaires particulièrement préfé- rée, dérivés de cellules de singe et d'hépatocytes de sin- ge, pour la production d'un antigène du virus de l'hépati- te B, de préférence de HBs Ag ou d'un polypeptide présen- tant des propriétés immunogènes analogues, ces hybrides cellulaires étant d'une grande stabilité et capables de rendements de production d'antigène, notamment pour la production de vaccins, rarement sinon jamais atteints, dans les micro-organismes transformés par des techniques du génie génétique. En d'autres termes, l'invention consiste dans la sélection d'hybrides cellulaires particulièrement efficaces au sein des catégories d'hybrides cellulaires définis de façon plus générale dans le brevet principal. L'hybride cellulaire selon l'invention, transformé ou transformable par une séquence d'ADN clonée contenant tout ou partie d'un gène déterminé contenu dans le génome du virus de l'hépatite B, cette séquence étant incorporée ou incorporable dans des conditions autorisant son expres- sion dans ledit hybride cellulaire, est caractérisé en ce qu'il contient, d'une part, une partie au moins du patri- moine génétique d'une lignée d'hépatocytes de singe, de préférence de chimpanzé ou de singe vervet, naturellement favorables à l'expression de gènes naturels contenus dans le génome du virus de l'hépatite B et, d'autre part, un marqueur génétique permettant à cet hybride cellulaire de pousser dans un milieu sélectif ou contenant un principe actif normalement léthal pour des cellules de singe, mais inactivable par le polypeptide exprimé par ledit marqueur génétique.L'hybride cellulaire selon l'invention contient de préférence également une partie au moins du patrimoine génétique de cellules établies mais non tumorales ou oncogènes de singe, de préférence de cellules de la lignée VERO dont des caractéristiques particulières sont encore rappelées plus loin. L'invention concerne également un procédé de fa- brication d'un tel hybride cellulaire au sein d'un milieu de culture approprié, ce procédé étant caractérisé: - en ce que l'on réalise une coculture, dans des condi- tions propres à permettre leur hybridation, d'une part, de cellules non tumorales de singe établies dans lesquel- les la susdite partie de gène du génome de l'hépatite B est exprimable ou exprimée, ces cellules non tumorales étant cependant dépourvues d'une séquence génétique déter- minée et, d'autre part, d'hépatocytes de singe, de préfé- rence de chimpanzé, qui sont aptes ou ont au préalable été rendus aptes à fournir ladite séquence génétique détermi- née à au moins une partie des hybrides cellulaires qui se- ront formés dans ledit milieu de culture, et, - en ce que cette culture est réalisée dans un milieu qui n'autorise le développement des cellules établies de sin- ge, que lorsque celles-ci sont complémentées par ladite séquence génétique déterminée ou appropriée apportée par les hépatocytes, et - en ce que l'on recueille les hybrides cellulaires for- més. Tout type de cellules établies non tumorales de singe pouvant être maintenue en culture peut être utilisé pour la mise en oeuvre du procédé selon l'invention. On a de préférence recours à des lignées cellulaires hétéro- ploides Vero de primates non humains, telles que celles décrites par PETRICCIANI, J.C., KIRSCHSTEIN, R.L., HINES, J.E., WALLACE, R.E. et MARTIN, D.P. (1973), "J. Natl. Can- cer Inst.", 51, 191-196. Ces dernières cellules se sont révélées non tumorigènes, même lorsque testées dans des singes soumis à un traitement immunosuppresseur. Le milieu de culture, aussi bien que les cellules établies mises en oeuvre, sont choisis de façon à satis- faire aux conditions qui ont été définies plus haut. Le milieu est tel et les cellules établies sont telles que celles-ci ne peuvent pas se développer dans le milieu choisi, sauf à être complémentées par une séquence géné- tique apportée par les hépatocytes. Les cellules établies sont par exemple constituées par des cellules présentant une déficience naturelle ou induites au niveau d'un de leurs gènes, cette déficience leur interdisant de se développer dans un milieu détermi- né, cette déficience pouvant cependant être compensée par l'incorporation d'un gène homologue exprimable sous la forme d'une protéine homologue à celle qui aurait été spécifiée par le gène correspondant, s'il n'avait été déficient. Les cellules ayant incorporé le gène homologue sont alors à même de se développer dans le milieu considéré. C'est à cette possibilité de compensation que se réfère l'expression "complémentation" qui a été utili- sée dans la définition la plus générale indiquée plus haut du procédé selon l'invention. Divers exemples de gènes ou de séquences d'ADN complémentables ont été mentionnés par exemple dans la demande de brevet France n' 81 01137 dé- posée le 2 mars 1981. A ce type d'ADN appartiennent notam- ment ceux du virus dit "Herpès simplex Virus" du type 1 (HSV1), le gène de la thymidine-kinase (TK), le gène de l'adénine phosphoribosyl-transférase (APRT) et de la dihy- drofolate réductase (DHFR), etc. de l'enzyme xanthine- guanine phosphoribosyl-transférase (XGPRT), ou de l'hypoxanthine guanine phosphoribosyl transférase (HGPRT). A chacun de ces "ADN de complémentation" corres- pondent des milieux répondant aux conditions sus-indi- quées. Dans le cas préféré conforme à la présente inven- tion, dans lequel on a recours à des cellules VERO HGPRT-, on aura avantageusement recours au milieu connu sous le nom de "milieu HAT" (contenant de l'hypoxanthine et de l'amino-ptérine en sus de la thymidine) . Ce milieu est connu pour n'autoriser l'éventuelle synthèse de thymidine phosphate que par l'intermédiaire d'une voie métabolique dite "voie de sauvetage" (salvation pathway), cette voie impliquant cependant que soit préservée l'intégrité du gène HGPRT des cellules susceptibles de s'y développer. Puisque la séquence nucléique de complémentation va leur être apportée par les hépatocytes (eux-mêmes HGPRT+), seuls les hybrides auxquels le gène correspondant a été transmis au cours de la fusion cellulaire peuvent se développer dans le milieu de culture choisi. Les cellules établies non engagées dans la constitution de l'hybride et non complémentées ne peuvent s'y développer, tout comme les cellules primaires elles-mêmes qui, par nature, n'ont qu'une durée de survie limitée. Dans un mode de mise en oeuvre équivalent du pro- cédé selon l'invention, on aura recours à l'introduction dans le milieu d'une substance susceptible d'interdire la prolifération, voire de tuer rapidement les deux types de cellules, dans la mesure o à cette substance correspond une deuxième substance, notamment une enzyme, susceptible d'inactiver la première, la seconde étant codée par une séquence d'ADN déterminée, susceptible d'être introduite préalablement dans les cellules primaires. La première substance est par exemple constituée par un antibiotique, tel que celui connu sous la désignation G418, la seconde substance étant alors constituée par un aminoglycoside 3'-phosphotransférase. On pourra encore se référer pour l'illustration de ce principe à la demande de brevet déjà mentionnée plus haut n' 81 0437. Comme dans le cas précé- dent, seul survivra l'hybride, qui aura "reçu en héritage" de la cellule primaire la séquence d'ADN codant pour la- dite aminoglycoside 3'-phosphotransférase. Selon une première alternative du procédé selon l'invention, soit les cellules établies, soit les hépato- cytes, soit les deux à la fois, ont été transformés préa- lablement à la coculture susdite avec la séquence d'ADN clonée contenant un fragment du génome de l'hépatite B. Le procédé selon l'invention comprend alors une sélection, après la susdite coculture, des susdits hybrides cellulai- res formés qui se révèlent aussi producteurs du peptide immunogène ou de l'antigène codé par la susdite séquence d'ADN clonée. Dans une seconde alternative du procédé selon l'invention, ce sont les hybrides cellulaires obtenus, bien que non secréteurs, qui sont transformés par la sé- quence d'ADN clonée, le procédé selon l'invention compre- nant alors encore la sélection, après la susdite cocultu- re, de ceux des hybrides cellulaires formés qui se révè- lent aussi être producteurs de l'antigène, notamment du type HBsAg codé par la séquence d'ADN clonée. Dans ce qui précède, l'hybride non secréteur pouvait aussi bien être constitué par l'hybride obtenu à partir d'hépatocytes et de cellules établies qui n'avaient pas elles-mêmes été transformées au préalable. Celles-ci pouvaient cependant l'avoir également été. Dans ce cas, l'hybride utilisé pour la transformation pouvait être l'un de ceux qui n'avait pas été retenu dans le cadre de la sélection des hybrides cellulaires envisagée dans la première alternative. La séquence d'ADN clonée dérivée du génome du vi- rus de l'hépatite B, dont l'expression est recherchée, peut être constituée par tout fragment de gène naturel ou toute séquence résultant d'une transcription réverse d'un brin d'acide nucléique monocaténaire, par exemple d'un mARN, par voie enzymatique, voire par tout ADN obtenu par synthèse chimique. Par exemple, cette séquence est cons- tituée par un cADN codant pour un polypeptide identique à celui exprimé par le gène naturel correspondant ou un po- lypeptide équivalent, l'équivalence résultant notamment de l'analogie immunologique susceptible d'être reconnue entre ces deux polypeptides dans des réactions croisées corres- pondantes avec des anticorps préalablement formés contre le polypeptide naturel et le polypeptide équivalent. L'ex- pression "gène", telle qu'elle est utilisée plus haut dans la définition de l'invention, doit être interprétée comme s'étendant à toute séquence nucléotidique correspondante, telle que ci-dessus mentionnée. Pour réaliser la transformation ou la transfection des cellules établies ou des cellules primaires, avant hybridation de celles-ci, soit encore des hybrides préala- blement formés, on peut avoir recours à tout vecteur, no- tamment plasmide approprié. Les conditions auxquelles ce vecteur doit satisfaire sont uniquement qu'elles permet- tent la transformation effective et l'expression de la sé- quence d'ADN clonée dans les cellules utilisées. L'homme du métier sera parfaitement à même de choisir les types de plasmide à mettre en oeuvre, compte tenu de la nature des cellules à mettre en oeuvre dans l'hybridation et le cas échéant de la séquence d'ADN à cloner. Lorsque la séquence à cloner ne se trouve pas déjà placée sous le contrôle du promoteur qui permettra l'expression de cette séquence au sein de la cellule transformée, il sera avantageux de la mettre sous le contrôle direct d'un promoteur choisi parmi ceux qui permettent non seulement l'expression, mais l'ex- crétion du polypeptide exprimé dans le milieu de culture. Des promoteurs avantageux seront par exemple des promo- teurs forts tels que ceux obtenus à partir du virus SV40 ou du virus MMTV. Bien entendu, les vecteurs en question comprennent avantageusement tous les éléments génétiques susceptibles d'assurer la transcription et la traduction de la séquence d'ADN clonée dans une cellule de singe, par exemple les sites de polyadénylation, et de préférence aussi de la terminaison de la transcription de la séquence d'ADN con- cernée. Ceci étant, il n'est pas nécessaire d'insister sur la constitution des plasmides susceptibles d'être utili- sés. Un grand nombre de ces plasmides ont été décrits dans la littérature technique. Ils peuvent tous être mis en oeuvre dès lors qu'ils sont reconnus capables de transfor- mer des cellules de mammifère, plus particulièrement de cellules de la lignée VERO et d'apporter à ces dernières le gène ou la séquence d'ADN clonée susceptible d'être transcrite et exprimée dans ces cellules. Enfin l'hybridation proprement dite des cellules primaires et établies peut être réalisée dans des condi- tions classiques. Elle met en oeuvre de façon en soi con- nue tout agent capable de fragiliser les parois cellu- laires, au point de rendre la fusion possible. On peut classiquement utiliser le virus de Sendai ou plus avan- tageusement encore des polyalcoylène-polyols (PEG 1000), notamment le polyéthylène-glycol, par exemple à raison de 500 mg/ml ou à raison d'une solution de 40 % poids/volume de milieu de culture sans sérum du milieu de culture pen- dant 1 minute. D'autres caractéristiques préférées de l'invention apparaîtront encore au cours de la description de modes de mise en oeuvre préférés du procédé selon l'invention dans l'exemple qui suit. Stratéqie suivie: - Utilisation d'hépatocytes de singe mis en culture pri- maire, et fusion avec des cellules normales de singe, les cellules VERO, qui sont en outre HGPRT (pour la sélection ultérieure) et qui après intégration du gène S l'exprime à un niveau relativement faible. - Sélection des clones hybrides, et étude de leur niveau d'expression. Matériel et méthodes: 1) Obtention des lignées cellulaires de since produisant la protéine HBs. après transfection puis sélection des clones producteurs. Des cellules VERO HGPRT (cellules de singe déri- vées de cellules VERO déficientes en hypoxanthine guanine phosphoribosyl transférase, obtenues par Lee Cl.Y. et al 1983) ont été co-transfectées (technique de Graham & Van Der Eb 1973) par de l'ADN de deux vecteurs, l'un portant la région codante pour la protéine HBs (plasmide PASV, sous type a y w), l'autre (plasmide PW) portant le gène de l'aminoglycoside-3'-phospho-transférase (APH3'). Les cel- lules transfectées exprimant l'enzyme APH3' ont été sélec- tionnées en présence de 400 g/ml d'aminoglycoside G 418 (Colbère-Garapin et al 1980). Les clones issus de cette sélection ont alors été testés pour la production de la protéine HBs. 5 105 cellules VERO HGPRT ont été co-trans- fectées par 10 g d'ADN du plasmide PASV et par 2 g d'ADN du plasmide PW. Quatre jours après transfection, les cel- lules ont été divisées en quatre, et le milieu sélectif leur a été appliqué. 2) Origine des ADN transfectés. - Le plasmide PASV est dérivé du plasmide PAC2 (Pourcel et al 1982) et porte le gène codant pour la ré- gion S du virus HBV (fragment Stu 43-BgIII 1984), l'ori- gine de réplication du virus SV 40 ainsi que le promoteur précoce (fragment Pvu II 253- Hind III 5154). Le fragment pBR322 est délété entre 1120 et 2490 (R1 4360-Sal I 650) (Lusky M. et al 1981). - Le plasmide PW porte le gène codant pour l'ami- no-glycoside-3'-phosphotransférase conférant la résistance à l'aminoglycoside G 418 aux cellules exprimant cette en- zyme (Colbère-Garapin 1981). 3) Obtention. isolement et mise en culture primaire des hépatocytes de singe. - Le foie d'un singe (singe vert d'Afrique) a été 11: obtenu de l'Institut Mérieux. - Les hépatocytes ont été isolés après perfusion du foie par la collagénase, selon la méthode de Seglen (1973), avec quelques modifications (Guguen-Guillouzo et al 1980, J.F. Houssais et N. Chenciner 1983). - Les hépatocytes ont été mis en culture dans le milieu Ham F12, contenant Sérum Albumine, Insuline et Hydrocortisone, ainsi que 10 % de Sérum de Veau foetal. 4) Fusion des cellules VERO HGPRT- (déposé le 25 Avril 1985 sous le n' I438)(exprimant le qène S) avec les hépatocytes de singe en culture primaire. - La fusion a été effectuée après l'attachement des hépatocytes sur le plastique des flacons Falcon, et leur culture pendant 36 heures. 2 106 cellules des diffé- rents clones de cellules VERO HGPRT (clone 3, clone 357) ont été ajoutées aux cultures d'hépatocytes, et après leur attachement, la fusion a été induite par un court contact avec le polyéthylèneglycol, selon les modalités décrites par R.L. Davidson et P.S. Gerald 1976); 24 heures plus tard, les cultures ont été passées dans le milieu sélectif HAT (Littlefield 1964) afin d'éliminer les cellules paren- tales VERO HGPRT-. Les hépatocytes non fusionnés, fragili- sés par le PEG ont été éliminés spontanément. - Dans les semaines qui ont suivi, les clones hy- brides viables sont isolés, remis en culture et testés quant à leur capacité de production de l'antigène HBs. ) Détection et dosage de la production d'antigène HBs dans le milieu de culture. La présence d'antigène HBs a été détectée à l'aide des tests radioimmunologiques AUS-RIA II (Abbott). La quantité d'HBs Ag excrétée dans le milieu a été déterminée par rapport à une courbe étalon établie par dilution du standard d'HBs Ag de Abbott. Résultats: - Deux lignées cellulaires (V3 et V357) obtenues après co- transfection des cellules VERO HGPRT ont été utilisées pour les expériences de fusion avec les hépatocytes de singe (HAS). - Les niveaux de production de l'antigène HBS dans ces 2 lignées ont été les suivants: - V3 à transfert 4: 36 ng / 106 cellules / 24 heures (c'està-dire 18 ng / 5 10 cellules); - V357 à transfert 7: 65 ng / 106 cellules /24 heures (c'est-à-dire 32,5 ng / 5 105 cellules). - Les niveaux de production de l'antigène HBs dans les clones hybrides se sont répartis de la façon suivante: a) Hybrides V357 x HAS 4 clones testés: - 190 ng / 5 105 cellules / 24 heures - 169 ng " " - 95 ng " ng " b) Hybrides V3 x HAS - 484 ng / 5 105 cellules / 24 heures - 465 ng I n - 384 ng. n - 231 ng n n -714 ng. . - 291 ng r i Au vu de ces résultats, il convient de remarquer: - que la cellule VERO seule, après intégration du gène S, a toujours, malgré de nombreux essais dans divers labora- toires, exprimé ce gène à un niveau peu élevé, - dans l'hybride V357 x HAS, on a obtenu un coefficient multiplicateur allant de 2 à 5, - dans la fusion V3 x HAS, celui-ci s'est situé entre 12 et 40. Il apparaitra clairement à l'homme du métier que le système cellulaire hybride présente encore une grande latitude d'optimisation, par exemple en agissant au niveau du vecteur et des séquences d'ADN transfectées (promoteurs cellulaires, séquences enhancer...- et au niveau des hy- brides (sous-clonage, isolement de sous-clones hyperpro- ducteurs...) ou par modification de la composition du mi- lieu de culture, par addition de molécules naturelles ou synthétiques augmentant l'expression des gènes, etc. Dans ce qui précède, l'invention a été illustrée surtout en rapport avec la production de l'antigène HBs. Il va de soi que la technique décrite est applicable de la même façon à la production de polypeptides codés par tou- tes autres parties du génome du virus de l'hépatite B, par exemple à la production de l'antigène HBc. Une autre forme préférée s'adresse à des hybrides cellulaires rendus pro- ducteurs (selon les mêmes techniques que précédemment dé- crites) à la production de particules HBs portant la ré- gion peptidique, dite Pré S, contenant un récepteur pour la sérum albumine polymérisée. L'hybride V3 x HAS (cellules b32c) a été déposé le Avril 1985 à la Collection Nationale des Cultures de Microorganismes (CNCM) de l'Institut Pasteur de Paris, France, sous le n' 1-438. REVENDICATIONS - 1 - Procédé selon la revendication 1 du brevet principal, de fabrication d'un hybride cellulaire expri- mant ou susceptible d'être rendu capable d'exprimer une séquence d'ADN clonée, correspondant à au moins une partie du génome du virus de l'hépatite B, caractérisé: - en ce que l'on réalise une coculture, dans des condi- tions propres à permettre leur hybridation, d'une part, de cellules eucaryotes établies de singe, dans lesquel- les la susdite séquence d'ADN clonée est exprimable ou exprimée et, d'autre part, d'hépatocytes de singe, de préférence de chimpanzé, cette coculture étant réalisée dans un milieu qui n'autorise pas le développement des- dites cellules établies, lorsqu'elles ne sont pas com- plémentées par une séquence génétique appropriée appor- tée par les hépatocytes et - en ce que l'on recueille les hybrides cellulaires formés. 2 - Procédé selon la revendication 1, caracté- risé en ce que, soit les cellules établies, soit les hépatocytes, soit les deux à la fois, avaient été trans- formées, préalablement à la coculture susdite, avec la séquence d'ADN clonée susdite et en ce que l'on sé- lectionne, après ladite coculture, ceux des hybrides cellulaires formés, qui se révèlent ainsi être produc- teurs du polypeptide codé par le susdit ADN clone. 3 - Procédé selon la revendication 1, caracté- risé en ce que les hybrides cellulaires obtenus à l'is- sue de la susdite coculture sont eux-mêmes transformés avec ladite séquence d'ADN clonée et en ce que l'on sé- lectionne, après ladite coculture, ceux des hybrides cellulaires formés, qui se révèlent aussi être produc- teurs du polypeptide codé par la susdite séquence clo- née. 4 - Procédé selon l'une quelconque des revendi- cations 1 à 3, caractérisé en ce que les cellules éta- blies de singe sont des cellules de la lignée VERO. - Procédé selon la revendication 4, caracté- risé en ce que les cellules VERO sont des cellules HGPRT et en ce que le milieu de culture est un milieu sélectif HAT. 6 - Procédé selon l'une quelconque des revendi- cations I à 5, caractérisé en ce que le milieu de cultu- re contient un antibiotique, notamment du type aminogly- coside, capable de pénétrer dans des cellules eucaryo- tes, et en ce que les hépatocytes, ont au préalable été transformées avec une séquence d'ADN codant pour une enzyme capable d'inactiver l'antibiotique. 7 - Procédé selon la revendication 6, caracté- risé en'ce que l'antibiotique est constitué par le G418 et en ce que la séquence d'ADN code pour une aminogly- coside 3'-phosphotransférase. 8 - Procédé selon l'une quelconque des reven- dications 1 à 7, caractérisé en ce que la susdite sé- quence d'ADN clonée contient au moins une partie du gène S du virus de l'hépatite virale B. 9 - Procédé selon la revendication 8, caracté- risé en ce que la susite séquence d'ADN clonée contient aussi la région pré-S du génome du virus de l'hépatite virale B. - Hybride cellulaire, stable et capable de se multiplier, transformé ou transformable par une séquence d'ADN clonée contenant tout ou partie d'un gène détermi- né contenu dans le génome du virus de l'hépatite B, cette séquence étant incorporée ou incorporable dans des conditions autorisant son expression dans ledit hybride cellulaire, est caractérisé en ce qu'il contient, d'une part, une partie au moins du patrimoine génétique d'une lignée d'hépatocytes de singe, de préférence de chimpanzé, naturellement favorables à l'expression de gènes naturels contenus dans le génome du virus de l'hépatite B et, d'autre part, un marqueur génétique permettant à cet hybride cellulaire de pousser dans un milieu sélectif ou contenant un principe actif normalement léthal pour des cellules de singe, mais inactivable par le polypeptide exprimé par ledit mar- queur génétique. 11. Hybride cellulaire selon la revendication , caractérisé par le fait qu'il comporte, incorporé à son génome, une séquence d'ADN codant pour un polypep- tide immunogène protecteur contre le virus de l'hépatite B. 12. Hybride cellulaire selon la revendication 11, codant pour une partie au moins du gène S et, le cas échéant, de la région pré-S du génome du virus de l'hé- patite B.