FR 2567907 A1 19860124 FR 8508107 A 19850530 -1 - L'invention concerne un nouveau substrat syn- thétique et un procédé de dosage l'utilisant. Plus particulièrement, l'invention concerne un nouveau substrat synthétique pour le dosage de l'activi- té peptidasique et un procédé de dosage des peptidases. L'invention concerne un amide de formule: x R - NH OH y dans laquelle R est un radical L-leucyle ou -L-gluta- myle et X et Y sont semblables ou différents et sont des atomes d'halogène, ou un sel correspondant, et un procédé de dosage des peptidases qui comprend: un procédé de dosage de l'activité enzymatique qui consiste à traiter un amide de formule: R2 / 3 R1- NH R4 R6 R5 dans laquelle R1 est un radical L-leucyle ou i-L-gluta- myle, R2, R3, R4, R5 et R6 sont un atome d'hydrogène ou un radical halogéno, alkyle inférieur, alcoxy inférieur, amino, amino substitué, hydroxy, carboxy ou sulfo et R5 et R6 peuvent former ensemble un cycle carboné, ou un sel soluble correspondant,. avec une peptidase, à traiter l'amine ainsi libérée de formule --2-- R2 R3 H2N - R4 R6 R5 dans laquelle R2, R5, R4, R5 et R6 ont les mêmes signi- fications que précédemment, avec une oxydase qui con- somme de l'oxygène et forme un colorant en présence dWun coupleur de formule: R8 R9 R R10 / \ R12 Rl1 dans laquelle R est un atome'd'hydrogène ou un radical amino, amino substitué ou hydroxy, R8, R9, R10, R11 et R12 sont un atome d'hydrogène ou d'halogène ou un radi- cal alkyle inférieur, alcoxy inférieur, amino, amino substitué, hydroxy, carboxy ou sulfo et R11 et R12 peu- vent éventuellement former ensemble un cycle carbonée, ou R7 peut éventuellement être un atome d'hydrogène lorsqu'au moins un des symboles R8, R9, RIO, R1l et R12 est un radical amino, amino substitué ou hydroxy, puis à mesurer quantitativement les changements détectables, et un procédé de dosage qui consiste à traiter un amide de formule X R - NH-y OH 25679Q7 -3- dans laquelle R est un radical L-leucyle ou 1-L-gluta- myle et X et Y sont semblables ou différents et sont des atomes d'halogène, ou un sel correspondant, avec une peptidase dans un échantillon pour libérer un dérivé d'aniline de formule: x H2N X OH y dans laquelle X et Y ont les m9mes significations que précédemment, oxyder ledit dérivé d'aniline et mesurer quantitativement les changements détectableso Le terme bien connu de peptidase désigne les enzymes qui agissent sur la liaison peptidique des L- peptides et provoquent un clivage de l'extrémité N- terminale pour libérer des amino-acides ou des peptides plus petits. Par exemple des aminopeptidases, telles que la leucine-aminopeptidase (LAP vraie de la chimie clinique) ou l'arylamidase (LAP clinique de la chimie clinique, parfois appelée ci-après AA) (ci-après la LAP vraie et la LAP clinique sont désignées de façon géné- rale par l'abréviation LAP), la cystine-aminopeptidase, la prolineaminopeptidase, l'arginine-aminopeptidase, l'alanine-aminopeptidase ou la ' dase ( -GTP) sont bien connues. Parmi les enzymes précédentes, la LAP et la Y -GTP sont abondamment réparties dans les tissus vi- vants et dans le sérum. Ces enzymes présentent des te- neurs accrues dans des états pathologiques et sont des éléments importants du diagnostic clinique et pour le dosage de l'activité enzymatique dans les détermina- tions cliniques. -4-_ La LAP est une enzyme qui hydrolyse le reste amino-terminal d'un L-peptide qui comporte de la L-leu- cine ou un peptide apparenté comme reste N-terminal, pour libérer la Lleucine et qui in vivo est répartie dans les tissus et le sérum. La teneur sérique en LAP varie beaucoup selon l'état de l'organisme et elle est accrue dans l'hépatite aiguë, l'hépatome, l'hépatome métastatique, la cirrhose du foie et l'angiocholite. Donc l'activité de la LAP est révélatrice de ces symp- tômes et le dosage de l'activité de la LAP est indispen- sable au diagnostic clinique de ces symptômes. La y -GTP est une enzyme associée au métabo- lisme in vivo des Y-glutamyl-peptides qui catalyse la réaction d'hydrolyse du groupe -glutamyle des i-gluta- myl-peptides et transfère ledit groupe à d'autres amino- acides ou peptides et est abondamment répartie in vivo dans les tissus et dans le sérum. La -GTP sérique va- rie selon les états symptomatiques. On indique que la teneur sérique de la X-GTP est élevée dans l'hépatite par cholostase, l'ictère par obstruction, l'hépatome métastatique primitif et l'hépatite chronique active et réduite dans l'hépatite chronique non active. La dé- termination de l'activité de la -GTP sérique est spé- cifique de l'hépatite chronique et est utile pour le diagnostic clinique et l'éva luation pathologique de telles maladies. A ce jour les procédés de dosage de la LAP sont bien connus et la plupart d'entre eux sont des procédés de dosage colorimétrique de l'amine libérée sous l'effet de l'activité de la LAP. Dans le dosage on emploie le Lleucyl p-nitroanilide comme substrat synthétique et on mesure la couleur jaune de la p-nitro- aniline produite par l'action enzymatique de la LAP, cependant, lors de la détermination colorimétrique de cette couleur, le maximum d'absorption colorée fait -5- l'objet d'une superposition désavantageuse et de plus des composants du sérum, tels que le pigment bilirubine, ont un effet désavantageux. On connaît également un pro- cédé utilisant comme substrat synthétique le L-leucyl- A-naphtylamide. Cependant ce procédé a de nombreux in- convénients. Le procédé de dosage est très complexe et nécessite une réalisation précise, par exemple la f- naphtylamine formée est couplée avec le diazotate de -nitro-2aminométhoxybenzène pour former un colorant ou la 8-naphtylamine ainsi formée est diazotée avec le nitrite de sodium pour être couplée avec la N-(1-naph- tyl)-éthylènediamine ou est condensée avec le p-diméthyl- aminobenzaldéhyde ou le p-diméthylamino cinnamaldéhyde pour former un colorant qu'on dose par colorimétrie. De plus la substance standard qu'est la 8-naphtylamine est toxique et provoque des cancers ou des tumeurs de la vessie. On connaît des procédés de dosage de la '-GTP et la plupart d'entre eux sont des dosages colorimétri- ques d'une amine libérée à partir d'un substrat synthé- tique par la 1-GTP. Par exemple, dans un procédé de do- sage utilisant le f-glutamyl-p-nitroanilide, on traite le Y-glutamyl-p-nitroanilide avec la rer la p-nitroaniline jaune que llon mesure par colori- métrie à 410 nm. L'absorbance à 410 nm est masquée par des composés présents dans les humeurs de l'organisme, en particulier la bilirubine. Pour éviter l'effet du pigment bilirubine, un dosage témoin de l'échantillon doit faire l'objet d'une mesure stricte et exacte, ce qui entraîne des inconvénients. Egalement, la p-nitro- aniline libérée est condensée avec un aldéhyde tel que le p-diméthylamino cinnamaldéhyde ou le p-diméthyl- aminobenzaldéhyde pour produire une coloration que l'on dose par colorimétrie dans le rouge à grande longueur d'onde. La sensibilité de ce dosage colorimétrique est -6- modifiée par la température ce qui nuit à la reproduc- tibilité. Il existe de plus un procédé dans lequel la p-nitroaniline est diazotée et condensée avec le 3,5- xylénol et la couleur rouge ainsi formée est mesurée. Cependant ce procédé de dosage est assez complexe et nécessite de nombreux stades réactionnels. Il existe de plus un procédé de dosage employant un substrat synthétique, le K-L-glutamyl-B-naphtylamide. Dans ce procédé la 8-naphtylamine libérée par la '-GTP est transformée en le sel de diazonium et est mesurée par colorimétrie ou est mise à réagir avec la 3-méthyl-2- benzothiazolinone-hydrazone et un agent oxydant pour produire une couleur qu'on mesure par colorimétrie ou on condense l'aldéhyde de l'agent colorant précédent avec elle pour effectuer le dosage colorimétrique. Dans ces procédés, le caractère cancérigène de la B- naphtylamine pose un problème et également ces procédés de dosage nécessitent une régulation stricte du proces- sus réactionnel complexe, ce qui entraîne des inconvé- nients. La demanderesse a précédemment découvert que l'amide de formule suivante (qui n'existe pas dans le sérum) R" L - Leu - NH R' dans laquelle R' est un radical hydroxy, amino ou di- alkylamino inférieur et R" est un atome d'hydrogène ou un radical alkyle inférieur ou carboxy, est un excellent substrat synthétique pour la LAP et libère l'amine sous l'effet de la LAP. Ladite amine est oxydée par l'action d'une oxydase, tellque l'ascorbate-oxydase ou la lac- case et de l'oxygène est consommé pour former un chro- -7- mogène. L'activité de la LAP peut être déterminée par mesure de la quantité d'oxygène consommé ou de chromo- gène produit. Le procédé de dosage employant le substrat synthétique ci-dessus a pour inconvénients que le maxi- mum d'absorption du chromogène ne dépasse pas 550 nm et qu'il est gêné par des substances contaminantes présen- tes dans les humeurs de l'organisme, si bien qu'on re- cherche un substrat formant un chromogène ayant un maxi- mum d'absorption plus élevé. La demanderesse a découvert que l'amide de formule (1) est un substrat synthétique supérieur pour la LAP ou la par les substances contaminantes contenues dans les hu- meurs de l'organisme. De plus, la demanderesse a découvert un nou- veau substrat synthétique ayant une réactivité supé- rieure pour le dosage de la LAP ou de la '-GTP répon- dant à la formule suivante: X R - NH / O (4) \y dans laquelle R, X et Y ont les mêmes significations que précédemment et qu'une amine de formule -.8- x H 2N OH (5) \ dans laquelle X et Y ont les mêmes significations que précédemment, est libérée du substrat ci-dessus sous l'effet de l'action de la LAP ou de la i-GTP puis est oxydée par un agent oxydant ou une oxydase pour per- mettre le dosage de l'activité enzymatique. Un des objets de l'invention est de fournir un procédé de dosage d'activité enzymatique qui consiste à traiter un amide de formule R2 R3 R1 - NH "4R (1) R6 5 dans laquelle R1 est un radical L-leucyle ou Y-L-glu- tamyle, R2, R, R4, R5 et R6 sont un atome d'hydrogène ou d'halogène ou un radical alkyle inférieur, alcoxy in- férieur, amino, amino substitué, hydroxy, carboxy ou sulfo et R5 et R6 peuvent constituer ensemble un cycle carboné, ou un sel soluble dans l'eau correspondant, avec une peptidase, traiter l'amine ainsi libérée de formule R2 R \ / H 2N R4 (2) R6 R5 -9- dans laquelle R2, R3, R4, R5 et R6 ont les mêmes si- gnifications que précédemment, avec une oxydase qui consomme de l'oxygène et forme un pigment, en présence d'un coupleur de formule R8 R9 R -- Rio (3) ' R12 R1î dans laquelle R7 est un atome d'hydrogène ou un radical amino, amino substitué ou hydroxy, R8, R9, Ro10, R11 et R12 sont un atome d'hydrogène ou d'halogène ou un radical alkyle inférieur, alcoxy inférieur, amino, amino substi- tué, hydroxy, carboxy ou sulfo, et R11 et R12 peuvent ensemble former un cycle carboné ou R7 peut éventuelle- ment être un hydrogène lorsqu'au moins un des symboles R8, R9, R10, R11 et R12 est un radical amino, amino substitué ou hydroxy, puis à mesurer quantitativement les changements détectables. Unoautre objet de l'invention est de fournir un procédé de dosage qui comprend le traitement d'un amide de formule X R - NH - / OH (4) \y dans laquelle R est un radical L-leucyle ou Y -L-gluta- myle et X et Y sont semblables ou différents et sont des atomes d'halogène, ou un sel correspondant, avec une peptidase dans un échantillon pour libérer un dérivé d'aniline de formule: - -10- X H2N - OOH (5) dans laquelle A& et Y ont les mêmes significations que précédemment, l'oxydation dudit dérivé d'aniline et la mesure quantitative des changements détectables. Un autre objet de la présente invention est de fournir un nouveau substrat synthétique pour le do- sage de l'activité peptidasique de formule /I R - NH- \ OH dans laquelle R est un radical L-leucyle ou -L-gluta- myle et X et Y sont semblables ou différents et sont des atomes d'halogène, ou un sel correspondant. Un amide (1)-ou (4) constituant un substrat synthétique pour le dosage de la LAP ou de la Y-GTP de l'invention, peut être produit selon des procédés classiques de synthèse des peptides, par exemple par réaction du groupe carboxy de la L-leucine ou du groupe Y-carboxy de l'acide L- glutamique avec l'amine (2) ou le dérivé d'aniline (5). Dans la réaction de condensation ci-dessus, des radicaux réactifs ne participant pas à la réaction, tels que le radical amino de la L-leucine ou le radi- cal amino et le radical a-carboxy de l'acide L-gluta- -11- mique, doivent être protégés. Des exemples de radicaux protecteurs du radical amino sont des radicaux protec- teurs classiques d'uz4adical a-amino, tels que tert- butoxycarbonyle, tert-pentoxycarbonyle, benzyloxycarbo- nyle, p-nitrobenzyloxycarbonyle ou o-nitrophénylthio. Le radical acarboxy de l'acide L-glutamique est de préférence protégé sous forme d'un ester méthylique, d'- un ester éthylique, d'un ester tert-butylique, d'un es- ter tert-benzylique, d'un ester p-nitrobenzylique ou d'un ester p-méthoxybenzylique et ledit radical protec- teur peut être de préférence éliminé avec le radical protecteur du radical amino selon une opération d'éli- mination en un seul stade. Par exemple, le radical ami- no est protégé par un radical benzyloxycarbonyle et le radical a-carboxy est protégé sous forme de l'ester ben- zylique. Des exemples d'amines (2) employées dans la réaction de condensation sont celles comportant des ra- dicaux alkyles inférieurs, alcoxy inférieurs, amino, amino substitués, hydroxy, carbonyles ou sulfo par exemple l'o- (m- ou p-) toluidine, l'o(m- ou p-) éthylaniline, la 2,3- (2,4-, 2,5-, 2,6-, 3,4- ou 3,5) xylidine, l'o- (m- ou p-)anisidine, la 2,5-diméthoxy- aniline, la 2,5-diéthoxyaniline, l'o-(m- ou p-)chloro- aniline, l'o- (m- ou p-)bromoaniline, l'o- (m- ou p-) phénylènediamine, la N,N-diméthyl-m-phénylènediamine, la N,N-iméthyl-p-phénylènediamine, la N,N-diéthyl-p- phénylènediamine, la N,IN-dipropyl-p-phénylènediamine, l'o- (m- ou p-)aminophénol, l'acide o- (m- ou p-)amino- benzoique, l'acide p-aminobenzènesulfonique, la 4-hy- droxy-3,5-dichloroaniline, la 4-hydroxy-3,5-dibromo- aniline, la 2-(ou 4-) méthyl-o-phénylènediamine, la 2- hydroxy-5-toluidine, la 3- (ou 4-) chloro-o-toluidine, la 2-(ou 4-)méthylm-phénylènediamine, la 2-(ou 4-) chloro-m-phénylènediamine, l'acide 4-méthyl-m-amino- -12- benzoique, l'acide 2- (ou 3-) hydroxy-o-aminobenzoique, 1' acide 4-hydroxy-m-aminobenzoique, le 4-chloro-2-amino- phénol, la N-éthyl,N-hydroxy-éthyl-p-phénylènediamine, le 4-méthyl-2aminophénol, la 2-méthoxy-5-chloroaniline, la 3-chloro-o-toluidine ou la 4-chloro-o-toluidine. D'autres exemples d'amines (2) sont les composés de type naphtylamine, tels que l'a-naphtylamine ou l'acide 1- amino-6-naphtolsulfonique. Des exemples de dérivés d'aniline (5) sont la 3,5-dibromo-4-hydroxyaniline, la 3,5-dichloro-4- hydroxyaniline ou la 3-chloro-5-bromo-4-hydroxyaniline. Pour effectuer la réaction de condensation, on active le radical acarboxy de la L-leucine dont le radical a-amino est protégé ou le radical '-carboxy de l'acide L-glutamique dont le radical a-amino et le radi- cal a-carboxy sont protégés, en employant un halogénure d'acide, un anhydride d'acide, un azide d'acide, un imidazolide d'acide ou un ester activé tel qu'un ester cyanométhylique, un ester p-nitrophénylique, un ester 2,4-dinitrophénylique, un ester de N-hydroxysuccinimide ou un ester de N-hydroxyphtalimide et on fait réagir avec l'amine (2) ou le dérivé d'aniline (5). Sinon, on fait réagir la L-leucine ou l'acide L-glutamique proté- gés ci-dessus avec l'amine (2) ou l'aniline (5) en pré- sence d'un agent de condensation, par exemple un carbo- diimide tel que le N,N'-dicyclohexylcarbodiimide ou le N,N'carbonylimidazole et un sel d'isoxazolium tel qu'un réactif de Woodward. On effectue la réaction de condensation ci- dessus dans un solvant organique inerte tel que le dimé- thylformamide, le diméthylacétamide, le diméthylsulfo- xyde, le tétrahydrofuranne, le dioxanne, le benzène, le chloroforme, le dichlorométhane ou le dichloroéthane, avec une quantité égale d'aminoacide protégé et d'amine (2) ou de dérivé d'aniline (5) à la température ordi- -13- naire ou en dessous. On peut suivre la réaction par chromatographie en couche mince sur gel de silice (CCM) ou chromatographie liquide haute performance (CIZP) et on peut l'arrêter lorsqu'on a constaté la dispari- tion de la matière de départ. On dissout le produit réactionnel ainsi obte- nu, après avoir ou non chassé le solvant réactionnel par distillation, dans un solvant organique non miscible à l'eau tel que le chloroforme, le dichlorométhane, l'a- cétate d'éthyle, l'acétate de butyle, la méthylisobutyl- cétone, le benzène ou l'éther éthylique, en lavant avec de l'eau acide ou de l'eau alcaline et en éliminant le solvant pour isoler le produit. Si une purification complémentaire est nécessaire, on recristallise avec un solvant de recristallisation approprié ou on purifie par chromatographie sur une colonne de gel de silice, d'alumine active ou de résine absorbante. L'élimination du radical protecteur peut être effectuée selon un procédé classique de la chimie des peptides. Par exemple on élimine le radical tert-butoxy- carbonyle d'un radical a-amino avec de l'acide chlorhy- drique 2 N dans l'acide acétique, de l'acide trifluoro- acétique ou de l'acide formique et on élimine le radical benzyloxycarbonyle par réduction catalytique en emplo- yant du charbon palladié ou de l'acide bromhydrique dans l'acide acétique. On élimine l'ester benzylique d'un radical a-carboxy de l'acide Lglutamique par réduction catalytique avec du charbon palladié. On peut isoler l'amide (1) ou l'amide (4) ainsi obtenu par neutralisation du mélange réactionnel dans le cas de l'élimination du radical protecteur par décomposition acide ou par élimination du catalyseur dans le cas de la réduction catalytique, addition d'un solvant organique non miscible à l'eau, tel que le chlo- roforme, le dichlorométhane, le dichloroéthane, l'acé- -14- tate d'éthyle, l'acétate de butyle, la méthylisobutyl- cétone, le benzène ou l'éther éthylique, lavage à l'eau * acide et l'eau alcaline puis élimination du solvant. On effectue une purification complémentaire par recris- tallisation avec un solvant approprié ou par chromato- graphie sur une colonne en employant du gel de silice, de l'alumine active ou une résine adsorbante. L'amide (1) ou l'amide (4) peuvent être éven- tuellement préparés sous forme d'un sel, par exemple d'un sel minéral tel que le chlorhydrate, le sulfate, le nitrate ou le phosphate, ou d'un sel organique, tel que le formiate, l'acétate, le propionate, le maléate, le citrate, le tartrate ou l'oxalate. Dans l'invention, un amide (1) est hydrolysé par la LAP ou la -GTP de l'échantillon pour libérer l'amine (2) qui est condensée avec oxydation avec le coupleur (3) sous l'effet d'une oxydase pour former un composé chromogène (appelé ci-après chromogène). Des exemples de coupleurs (3) peuvent être un composé aro- matique formant un chromogène ayant des maximums d'ab- sorption à 550-750 nm et qui est condensé par oxydation avec l'amine (2) sous l'effet d'une oxydase. Des exemples préférés sont les phénols, les aminophénols, les anilines et les naphtols. Des exemples de phénols sont le phénol, l'acide salicylique, l'acide m-hydroxybenzoique, l'acide p-hydroxybenzoique, l'acide 2,6-dihydroxybenzoique, le salicylate de méthyle, l'o- (m- ou p-)crésol, l'o- (ou m-)éthylphénol, le 2,3-(2,4-, 2,5-. 3,5- ou 2, 6-)xylénol, l'o- (m- ou p-)méthoxyphénol, le 2,6-diméthoxyphénol, l'o (m- ou p-) chlorophénol, le 2,4- (ou 2,6-) dichlorophénol, l'o- (m- ou p-) bromo- phénol, le 2,4- (ou 2,6-) dibromophénol, le 2-méthyl-6- chlorophénol, le 2-chloro-5-méthylphénol, l'o-carboxy- méthylphénol ou le 2-hydroxy-4-aminoéthylphénol. Des exemples d'aminophénols sont le 4-chloro-2-aminophénol, -15- le N,N-diéthyl-maminophénol, le 4-méthyl-2-aminophénol, l'acide 5-amino-2-hydroxybenzoique, l'acide 2-amino-3- hydroxybenzoique, l'o- (m- ou p-) aminophénol, le 2,6- dichloro-4-aminophénol ou le 2,6-dibromo-4-aminophénol, Des exemples d'anilines sont l'aniline, l'o- (m- ou p-) toluidine, la N-méthylaniline, la N-éthylaniline, la N,N-diméthylaniline, la N,N-diéthylaniline, la N,N- diméthyl-o-toluidine, la N,N-diméthyl-p-toluidine, la N,N-diéthyl-otoluidine, la N,N-diéthyl-p-toluidine, l'o- (ou m-) chloroaniline, la mbromoaniline, l'acide anthranilique, l'acide 5-aminobenzoique, l'acide p- diméthylaminobenzoîque, la 4-chloro-o-toluidine, l'acide 3-amino-4méthylbenzoique, la m-phénylènediamine, la N,N-diméthyl-m-phénylènediamine, la 4-méthyl-o-phény- lènediamine, la 4-méthyl-m-phénylènediamine, la 2-chlo- ro-m-phénylènediamine, la 4-chloro-m-phénylènediamine, la 3-chloro-otoluidine, la 2-méthoxy-5-chloroaniline, l'o-éthylaniline, la 2,5-diéthoxyaniline, la N-éthyl- N-hydroxyéthylaniline ou la N-éthyl-N-hydroxyéthyl-m- toluidine. Des exemples de naphtols sont l'a-naphtol, le P-naphtol, l'acide 1-naphtol-2-carboxylique, le 4- chloro-1-naphtol, 1 'acide 1-hydroxy-2-naphtoique, 1 'a- cide 1-naphtol-2-sulfonique, l'acide 1-naphtol-4-sulfo- nique, l'acide 1-naphtol-8-sulfonique, l'acide 2-naph- tol-6-sulfonique, l'acide 2-naphtol-7-sulfonique, l'a- cide 2-naphtol-8-sulfonique, l'acide 2-naphtol-3,6- disulfonique ou l'acide 2-naphtol-6,8-disulfonique. Des exemples d'oxydases sont une oxydase qui - consomme de l'oxygène et qui peut former un chromogène par oxydation de l'amine libérée (2) isolément ou par couplage par oxydation de l'amine libérée (2) avec le coupleur (3). On peut mentionner par exemple l'ascor- bate-oxydase, la laccase, la tyrosinase, l'aminophénol- oxydase, la phénol-oxydase ou la polyphénol-oxydase. Des exemples préférés sont l'ascorbate-oxydase prove- -16- nant du potiron, du concombre ou de la chayotte (Se- chium edule) (brevet japonais publié non examiné n 56-88793) ou la laccase provenant de la laque (urushi, vernis japonais) ou de Basidiomycetes (Coriolus versi- color, Rhizopus ou Polyporus versicolor [J. Biochem.,50, 264 (1861), Biochim. Biophys. Acta, 73, 204 (1963), Acta Chem. Scand. 21, 2367 (1967)]. Un mode de réalisation de dosage de la LAP ou de la Dans le dosage de la LAP, on traite l'amide (1) constituant un substrat synthétique pour la LAP, dans lequel R1 est un radical L-leucyle, ou un sel cor- respondant, avec la LAP de l'échantillon pour libérer l'amine (2). L'échantillon est un échantillon de sérum dont le volume est de 0,01 à 5 ml. On effectue la réaction enzymatique à 37 C pendant 5 minutes ou plus. Le pH optimal de l'enzymeest pH 6,5-8,0. Des exemples de solutions tampons sont les so- lutions tampons à base de phosphate, borate, barbital, carbonate ou tris(hydroxyméthylamino)éthane. Dans le dosage de la Y-GTP, on traite un amide (1) constituant le substrat synthétique pour la Y -GTP, dans lequel R1 est le radical (-L- glutamyle, ou un sel correspondant, avec la '4-GTP de l'échantillon pour libérer l'amine (2). Le volume d'un échantillon de sérum est de 0,01 à 5 ml. On effectue la réaction enzy- matique à 37 C pendant 5 minutes ou plus. Le pH optimal de l'enzyme est pH 7,5-9,0. On effectue la réaction enzymatique dans le tampon de pH 7,5- 9,0 contenant comme accepteur un amino-acide ou un peptide tel que la gly- cylglycine pour déterminer l'amine (2) qui se forme en fonction de l'activité de la carbonate, triéthanolamine, glycine ou tris(hydroxy- -17- méthylamino)méthane. On peut, pour effectuer la détermination quantitative de l'amine (2), traiter avec une oxydase en présence du coupleur (3). La réaction colorée est effectuée au pH optimal de l'oxydase, généralement pH 6-7, pour former le chromogène par condensation par oxydation. Des exemples de tampons employés sont les tampons phosphate, borate, carbonate, acétate ou tris- (hydroxyméthylamino)méthane. La réaction enzymatique s'effectue à environ 37 C. Le chromogène formé par la condensation par oxydation de l'amine (2) et du cou- pleur (3) a des maximums d'absorption à 550-750 nm selon la nature du coupleur (3). En général, le chromo- gène présente une couleur bleue ayant des maximums d'ab- sorption à 570-700 nm, avec une grande sensibilité et une grande stabilité, insensibles à la température et que ne modifie pas une substance contaminante telle que la bilirubine et est préférable pour le dosage de la LAP ou de la -GTP. Dans l'invention, la réaction enzymatique entre l'amide (1) et la LAP ou la -GTP et la réaction de condensation par oxydation enzymatique entre l'amine (2) et le coupleur (5) peuvent s'effectuer simultané- ment. Dans ce cas le pH optimal doit être un pH commun à la LAP ou la '-GTP et à l'oxydase, tel que pH 7,0. On peut choisir la même solution tampon que précédemment. La détermination quantitative du chromogène ainsi formé peut de préférence être effectuée par colo- rimétrie à une longueur d'onde d'absorption spécifique du chromogène. La détermination de la longueur d'onde d'absorption spécifique peut être effectuée par mesure classique d'un spectre d'absorption du chromogène et on l'effectue généralement à 550-770 nm. On peut mesurer l'activité de la LAP ou de la T-GTP d'un échantillon par détermination de la quantité -18- d'oxygène consommé et on opère depréférence avec une électrode à oxygène. De plus l'oxydase précitée est immobilisée selon une technique d'immobilisation connue et cette enzyme immobilisée est combinée à l'électrode pour constituer une électrode enzymatique. On peut ef- fectuer des dosages rapides, simples et répétés au moyen de ladite électrode enzymatique et cette électrode peut être montée dans un système de dosage automatique. Egalement, la mesure effectuée à partir des modifica- tions électrochimiques de l'électrode à oxygène permet d'économiser l'enzyme coûteuse.L'activité de la LAP ou de la (-GTP peut être déterminée par conversion de l'im- portance de la valeur enregistrée ou lue de la modifica- tion électrochimique mesurée par l'électrode. Comme précédemment expliqué, l'invention con- cerne un procédé de dosage dont chaque stade réactionnel est simple et qui permet une mesure exacte et rapide de la LAP ou de la --GTP. De plus, le chromogène formé a des maximums d'absorption à 550-750 nm avec lesquels les substances contaminantes des échantillons n'interfèrent pas. Un mode de réalisation de dosage d'une pepti- dase avec un amide (4) est le suivant. On traite un amide (4) ou un sel correspon- dant, par la peptidase de l'échantillon, en particulier la LAP ou la -GTP pour libérer le dérivé d'aniline (5). Ledit dérivé d'aniline est transformé en chromo- gène par l'action d'un agent oxydant ou d'une oxydase, et on mesure par colorimétrie le composé coloré ou on mesure avec une oxydase la quantité d'oxygène consommée. On préfère effectuer un dosage colorimétrique du chromogène par mesure de la coloration produite par la condensation par oxydation du coupleur (3) et du dé- rivé d'aniline (5). Des exemples de coupleurs sont des composés aromatiques qui forment un chromogène par con- -19- densation par oxydation avec le dérivé d'aniline (5) et on préfère les coupleurs (3) de la série du phénol, de l'aminophénol, de l'aniline ou du naphtol précédem- ment mentionnés. On effectue la condensation par oxydation à un pH de 4-12 pour achever la réaction colorée. Des tampons ou des solutions alcalines aqueuses d'ajuste- ment du pH sont constitués de tampons carbonate, phos- phate ou borate ou d'une solution d'hydroxyde alcalin. La condensation s'effectue en présence d'un agent oxy- dant ou d'une oxydase pouvant condenser par oxydation le dérivé d'aniline (5) avec le coupleur (3). Des exemn- ples d'agents oxydants sont de façon générale les agents oxydants halogénés tels qu'un periodate, la chloramine T ou l'acide hypochloreux, des agents oxy- dants de type peroxyde tels qu'un persulfate ou le pe- roxyde d'hydrogène ou un complexe cyanoferrique et un exemple préférable en est le métaperiodate de sodium. Des exemples préférables d'oxydases sont la laccase, l'ascorbate-oxydase ou la tyrosinase. L'oxydation par l'oxydase peut être effectuée de la même façon que celle de l'amide (1). Le chromogène ainsi formé par la condensation par oxydation du dérivé d'aniline (5) et du coupleur (3) a une longueur d'onde d'absorption maximale située à environ 550-770 nm selon la nature du coupleur et c'est généralement un pigment coloré dont la longueur d'onde d'absorption maximale est de 570-680 nm. Cette coloration est très sensible et stable et la température et les substances contaminantes de l'échantillon, telles que la bilirubine, sont sans effet sur elle. Donc elle ne provoque pas d'erreur absolue et elle est préférable pour le dosage d'une peptidase telle que la IAP ou la Y -GTP. Un autre procédé de dosage colorimétrique du Z567907 -20- dérivé d'aniline (5) consiste à effectuer la détermina- tion colorimétrique de la couleur produite par traite- ment d'un complexe pentacyanoferrique avec un peroxyde. Des exemples de peroxydes sont le periodate de sodium, le periodate de potassium, le permanganate de potassium ou le peroxyde d'hydrogène. Le peroxyde d'hydrogène est préférable. On peut obtenir un réactif constitué d'un complexe ferrique stable, par mélange du complexe cyano- ferrique ci-dessus avec un bicarbonate tel que le bi- carbonate de sodium, le bicarbonate de lithium ou le bicarbonate de potassium et un dextrane de bas poids moléculaire. Ce mélange complexe est stable sous forme d'une poudre lyophilisée et est préférable comme réac- tif pour un nécessaire de dosage colrimétrique. On effectue le dosage colorimétrique en em- ployant un complexe cyanoferrique à un pH acide, de préférence à pH 3-7 et mieux à pH 4-5,5, Pour maintenir le pH on emploie un tampon classique. Des exemples de tampons sont un tampon lactate, citrate ou oxalate 0,01-1 M et de préférence 0,05-0,4 M. Le chromogène qui est formé par la réaction du complexe cyanoferrique et du dérivé d'aniline (5) a un maximum d'absorption au voisinage de 700 nm avec une coloration stable et il convient au dosage d'une peptidase telle que la LAP ou la -GTP. On peut de plus doser une peptidase telle que la LAP ou la de sodium Na2[Fe(CN)5.H20] et du dérivé d'aniline libé- ré (5). De plus, le dosage d'une peptidase peut être effectué par colorimétrie selon un procédé de dosage colorimétrique chimique classique, par exemple par co- lorimétrie d'une amine aromatique, selon le procédé de copulation diazolque, ou par colorimétrie de la base de Schiff formée par réaction avec un composé de type -21- aldéhyde. Le dosage de la LAP avec un amide (4) est il- lustré en détail ci-après. On effectue la réaction enzymatique du subs- trat synthétique de la LAP qu'est le L-leucyl-3,5-di- halogéno-4hydroxyanilide avec la LAP de l'échantillon pour libérer le dérivé d'aniline (5), c'est-à-dire la 3,5-dihalogéno-4-hydroxyaniline. On emploie comme échan- tillon 0,01 à 7 ml de sérum et on effectue la réaction enzymatique à 37 C pendant plus de 5 minutes. Le pH op- timal de la réaction est pH 6,5-8,0 et on le maintient avec une solution d'un tampon tel qu'un phosphate, un barbital, un borate ou le tris(hydroxyamino)méthane. On peut effectuer la détermination colorimé- trique du dérivé d'aniline (5) ainsi formé en présence d'un coupleur, tel que le p-xylénol, et en conditions alcalines, à partir du chromogène formé par condensa- tion par oxydation avec un réactif oxydant, tel que le métaperiodate de sodium ou sinon on peut effectuer une détermination colorimétrique par emploi du réactif colo- ré obtenu par oxydation de pentacyanoaminoferroate avec un réactif oxydant tel que le peroxyde d'hydrogène. De plus, le dosage colorimétrique peut être effectué par traitement avec une oxydase pour consommer de l'oxygène et libérer le chromogène avec mesure de l'oxygène con- sommé ou du chromogène formé. Un mode de réalisation du dosage de la X-GTP employant un amide (4) est illustré en détail ci-après. On effectue la réaction enzymatique du subs- trat synthétique de la d-GTP qu'est le ' -L-glutamyl- 3,5-dihalogéno-4-hydroxyanilide avec la V-GTP d'un échantillon pour libérer le dérivé d'aniline (5) cons, titué de la 5-dihalogéno-4hydroxyaniline. Le volume de l'échantillon de sérum est de 0,01-5 ml. On effectue la réaction enzymatique de la -22- -GTP à 37 C pendant plus de 5 minutes à un pH optimal de 7,5-9,O. On peut effectuer la réaction dans un tampon à pH 7,5-9,0 contenant comme accepteur un amino-acide ou un peptide tel que la glycyl-glycine et on détermine le dérivé d'aniline (5) qui se forme proportionnellement à l'activité de la (-GTP. Des exemples de solutions tampons sont les solutions de phosphate, barbital, borate, carbonate, triéthanolamine, glycine ou tris(hydroxyméthylamino)- méthane. On peut déterminer le dérivé d'aniline (5) de la même façon que dans le dosage de la LAP. Comme précédemment exposé, un procédé de do- sage de l'invention utilisant comme substrat synthé- tique un amide (4) est constitué de stades réactionnels simples et permet de doser rapidement et de façon pré- cise une peptidase comme la LAP ou la % -GTP. De plus comme le chromogène formé a un maximum d'absorption à 550-750 nm, l'effet d'une substance contaminante pré- 2C sente dans l'échantillon peut être évité et le dosage précis d'une peptidase peut être réalisé. De plus, un procédé de dosage de l'invention est réalisé avec un stade de réaction enzymatique modé- rée et la LAP ou la '-GTP peuvent faire l'objet d'un dosage enzymatique selon un stade réactionnel unique et simple. Le procédé peut facilement être adapté à un système automatique et on peut ainsi obtenir une vi- tesse de dosage impossible selon le procédé de dosage chimique classique antérieur. L'invention sera mieux comprise à la lecture de la description qui suit faite en regard des dessins annexés dans lesquels: la figure 1 est le spectre IR du L-leucyl- 3,5-dichloro-4-hydroxyanilide.HC1; la figure 2 est le spectre IR du BOC-L-leucyl- -23- 3,5-dibromo-4-hydroxyvanilide; la figure 3 est le spectre IR du -T,-L-gluta- myl-3,5-dichloro-4-hydroxyanilide; la figure 4 est le spectre IR du -L-gluta- myl-3,5-dibromo-4-hydroxyanilide; la figure 5 est la courbe d'absorption du colorant formé à partir du L-leucyl-4-N,N-diéthylamino- anilide, du 1-naphtol-2-sulfonate, de la laccase et du sérum; les figures 6 et 7 sont des courbes de la va- riation de l'absorption effectuées par mesure de l'ac- croissement de l'absorption en fonction du temps de ré- action lorsqu'on emploie le L-leucyl-4-N,N-diéthyl- aminoanilide, le 1-naphtol-2-sulfonate, la laccase et le sérum; la figure 8 est une courbe de la variation de l'absorption semblable à celles des figures 6 et 7, si ce n'est que le 1-naphtol-2-sulfonate est remplacé par du phénol; la figure 9 est une courbe de l'absorption du colorant formé dans les mêmes conditions que pour la figure 8; la figure 10 est une courbe de la variation de l'absorption semblable & celles des figures 6 et 7 si ce n'est que le L-leucyl-4-N,N-diéthylaminoanilide est remplacé par le L-leucyl-4-N,N-diméthylaminoanilide; la figure 11 est une courbe de la variation de l'absorption semblable à celle de la figure 10, si ce n'est que le 1-naphtol-2-sulfonate est remplacé par du phénol; la figure 12 est une courbe de la variation de l'absorption semblable à celles des figures 6 et 7, si ce n'est que le L-leucyl-4-N,N-diéthylaminoanilide, la laccase et le sérum sont remplacés par le L-leucyl- 3,5-dibromo-4-hydroxyanilide, 1'ascorbate-oxydase et -24- 1 'arylamidase; la figure 13 est une courbe d'absorption du colorant formé dans les mêmes conditions que pour la figure 12; la figure 14 est une courbe de la consomma- tion d'oxygène en fonction du temps de réaction pour la réaction employant le L-leucyl-3,5-dibromo-4-hydroxy- anilide, le 1-naphtol-2-sulfonate, l'ascorbate-oxydase et 1'arylamidase; la figure 15 est une courbe de la consomma- tion d'oxygène en fonction du temps de réaction pour la réaction employant le L-leucyl-3,5-dibromo-4-hydroxy- anilide, le 1-naphtol-2-sulfonate, la laccase et l'aryl- amidase; les figures 16 et 17 sont des courbes de la variation de l'absorption déterminées par mesure con- tinue de l'accroissement de l'absorption en fonction du temps de réaction pour la réaction employant le Y -_- glutamyl-4-N,N-diéthylaminoanilide, la glycylglycine, le 1-naphtol-2sulfonate, la laccase et le sérum; la figure 18 est une courbe d'absorption du colorant formé dans les mêmes conditions que pour les figures 16 et 17; la figure 19 est une courbe de consommation d'oxygène en fonction du temps de réaction pour la ré- action employant le -L-glutamyl-4-N,N-diéthylamino- anilide, la glycylglycine, le 1-naphtol-2-sulfonate, la laccase et le sérum; et la figure 20 est une courbe étalon de la Y -GTP déterminée par emploi du i -L-glutamyl-3,5- dibromo-4-hydroxyanilide, de la glycylglycine, du p-xylénol et du métaperiodate de sodium. On emploie ci-après les abréviations suivan- tes: Leu: 1-leucyle; -25- y -Glu: Y -L-glutamyle; BOC: tertbutoxycarbonyle; OSu: ester N-hydroxysuccinimidique; AcOH: acide acétique BuOH: butanol Exemple 1 L-leucyl-3,5-dichloro-4-hydroxyanilide.HCl: On ajoute goutte à goutte en agitant à 0-5 C, une solution (25 ml) de 3,28 g (10 mmoles)de BOC-Leu-OSu dans le dioxanne à 1,78 g (10 mmoles) de 2,6-dichloro- 4-aminophénol et 1,26g (15 mmoles) de bicarbonate de sodium dissous dans 25 ml d'eau. On agite le mélange pendant une nuit à la température ordinaire et on chasse le dioxanne par distillation sous vide en des- sous de 30 C. On dissout le résidu dans 200 ml d'acé- tate d'éthyle, on lave trois fois avec du bicarbonate de sodium saturé, de l'eau, de l'acide chlorhydrique 1 N et une solution saturée de chlorure de sodium (chaque fois 50 ml). On sèche la couche d 'acétate d'é- thyle avec du sulfate de magnésium anhydre et on con- centre sous vide pour obtenir 2,96 g de BOC-L-leucyl- 3,5-dichloro-4-hydroxyanilide. On dissout le produit dans 15 ml d'HCl 2 N / AcOH, on agite à la température ordinaire et on cristallise par addition de 100 ml d'é- ther éthylique anhydre qu'on a soumis à deux décanta- tions avec de l'éther anhydre. On sèche les cristaux sous vide pour obtenir le L-leucyl-3,5-dichloro-4- hydroxyanilide.HCl. Rendement: 1,89 g (rendement:57,7 %) Formule moléculaire: C12H16N202Cl2.HCl P.F.: 127-133 C (décomposition) CCM: Rf = 0,63 [BuOH-AcOH-eau (4/1/1)] Spectre IR (KBr): figure 1 256790? -26- Exemple 2 * L-leucyl-3,5-dibromo-4-hydroxyanilide.HCl: On ajoute goutte à goutte 70 ml d'une solution de 6,01 g (18,3 mmoles) de BOC-Leu-OSu dans le dioxanne à 0-50C dans 4,90 g (18,8 mmoles) de 2,6-dibromo-4-amino- phénol et 1,68 g (20 mmoles) de bicarbonate de sodium dissous dans 20 ml-d'eau. On agite le mélange à la tem- pérature ordinaire pendant plus d'une nuit et on chasse le dioxanne par distillation en dessous de 30 C. On dis- sout le résidu dans 400 ml d'acétate d'éthyle et on lave trois foiavec une solution aqueuse saturée de bicarbo- nate de sodium, de l'eau, de l'acide chlorhydrique 1 N et une solution saturée de chlorure de sodium (100 ml chaque fois). On sèche la couche d'acétate d'éthyle avec du sulfate de magnésium anhydre et on concentre sous vide pour obtenir 5,8 g de BOC-L-leucyl-3,5-dibromo-4- hydroxyanilide. On dissout le produit dans 3,0 ml d'HCl 2 N/Ac0H et on agite à la température ordinaire pendant 2 heures puis on ajoute de l'éther anhydre pour cristal- liser le produit, le L-leucyl-3,5-dibromo-4-hydroxy- anilide.HCl. Rendement: 2,50 g (rendement: 32,8 %) Formule moléculaire: C12H16N202Br2.HCl (416,54) CCM (gel de silice": Rf = 0,65 [ BuOH/AcOH/ eau (4/1/1)] P.f.: 131-134 0C (décomposition) Spectre IR (KBr): figure 2. Exemple 3 -L-glutamyl-3,5-dichloro-4-hydroxyanilide: On agite à 60 C pendant 2 heures 5,16 g (20 mmoles) d'anhydride de l'acide N,N-phtaloyl-L-gluta- mique et 3,56 g (20 mmoles) de 4-amino-2,6-dichlorophé- nol dissous dans 50 ml de dioxanne. On chasse le dio- xanne par distillation sous vide et on ajoute 1,5ml d'hydrate d'hydrazine dans 50 ml de méthanol puis on -27- laisse reposer à la température ordinaire pendant 2 jours. On chasse le méthanol par distillation sous vide, on ajoute de l'eau au résidu et on ajuste le pH à 3 par addition d'acide chlorhydrique 0,5 N pour obte- nir 3,96 g de i -L-glutamyl-3,5-dichloro-4-hydroxyani- lide précipité. Rendement: 3,96 g (rendement: 64,5 %) Formule moléculaire: C1H13N303C12 P. f.: 214-217 C (décomposition) CCM sur gel de silice: Rf = 0,49 (BuOH- AcOH-H20 = 4/1/1) Spectre IR (KBr): figure 3 Exemple 4 (8,4 mmoles) d'anhydride de l'acide N,N-phtaloyl-L- glutamique et 2,26 g (8,4 mmioles) de 4-anino-2,6- dibromo-phénol dissous dans 20 ml de dioxanne. On chasse le dioxanne par distillation sous vide et on ajoute au résidu 0,7 ml d'hydrate d'hydrazine dans ml de méthanol et on laisse reposer à la température ordinaire pendant 2 jours. On chasse le méthanol par distillation sous vide, on ajoute de l'eau au résidu et on ajuste le pH à 5 par addition d'acide chlorhydri- que 0,5 N pour obtenir 2,15 g de Y-L-glutamyl-5,5- dibromo-4-hydroxyanilide précipité. Rendement: 2,13 g (rendement 64,0 %) Formule moléculaire: C11Hl3N1303Br2 P.f.: 191-194 C (décomposition) CCN sur gel de silice: Rf = 0,53 (BuOH-AcOH- H20 = 4/1/1) Spectre IR (KBr): figure 4 Exemple 5 Dosage de la LAP avec le L-leucyl-4-N,N- diéthylaminoanilide, l'acide 1-naphtol-2-sulfonique et -28- la laccase: On prépare une solution substrat constituée d'une solution de tampon phosphate 0,1 M (pH 7,0) de L-leucyl-4-N,N-diéthylaminoanilide.2HC1 (2 mmoles) et comme coupleur le 1-naphtol-2-sulfonate de potassium (0,5 mmole). On ajoute à 2,0 ml de la solution substrat 1001l (330 U) de solution de laccase provenant de Polyporus versicolor et 50O1l de sérum (ILAP: 879 unités G-R/ml) et on incube à 37 C pour former un colorant. (Le spectre d'absorption du colorant est illustré par la figure 5, maximum d'absorption: 655 nm). Dans la réaction on mesure en continu l'absorption à 655 nm du colorant formé à chaque moment. Le résultat est il- lustré par la figure 6. La figure 7 montre le résultat obtenu par em- ploi de sérum à 414 unités G-R/ml. Comme le montrent les figures 6 et 7, l'acti- vité de la LAP sérique peut être mesurée exactement se- lon un procédé de dosage de l'invention et, contraire- ment à la méthode de colorimétrie chimique connue, le mélange se colore dès le début de l'action de la LAP, ce qui permet un dosage cinétique. Exemple 6 Dosage de la LAP avec le L-leucyl-4-N,N- diéthylaminoanilide, le phénol et la laccase: On prépare un substrat contenant 2 mmoles de L-leucyl-4-N,N-diéthylaminoanilide.2HCl et 1 mmole de phénol comme coupleur dans du tampon phosphate 0,1 M (pH 7,0). On ajoute à 2 ml de solution substrat 100l (330 U) de solution de laccase et 50ul de sérum (LAP: 879 unités G-R/ml) et on incube à 37 C pour former un colorant. Dans la réaction, on mesure en continu la couleur (ma- ximum d'absorption à 670 nm) formée à chaque moment de réaction. Le résultat est illustré par la figure 8. -Comme le montre la figure 8, un procédé de do- -29- sage de l'invention est un procédé de dosage simple et exact de la LAP et, de plus, le mélange réactionnel se colore dès que l'action de la LAP commence, ce qui per- met un dosage cinétique. La courbe d'absorption du colorant formé dans le procédé ci-dessus pour chaque longueur d'onde est illustrée par la figure 9 sur laquelle le maximum d'ab- sorption est à 670 nm. Exemple 7 Dosage de la LAP avec le L-leucyl-4-N,N- diéthylaminoanilide, un coupleur (2,3-diméthylphénol, 2,4-diméthylphénol, 2,5-diméthylphénol et 2,6-diméthyl- phénol) et la laccase: On reprend l'exemple 5 en remplaçant le 1- naphtol-2-sulfonate par le 2,3-diméthylphénol, le 2,4- diméthylphénol, le 2,5-diméthylphénol ou le 2,6-diméthyl- phénol pour préparer une solution substrat contenant 2 mmoles de L-leucyl4-IN,N-diéthylaminoanilide et 0,5 mmole de coupleur dans du tampon phosphate 0,1 M (pH 7,0). On ajoute à 2 ml de la solution substrat 100/ul de solution de laccase (330 U) et 50/ul de sérum (LAP: 879 unités G-R/ml) et on incube à 37 C. Après 10 minutes, on mesure l'absorption du colorant formé à sa longueur d'onde d'absorption maximale. Les résultats figurent dans le tableau 1. Tableau I Coupleur Maximum d'absorption Densité optique 2,3-diméthylphénol 630 nma 0,168 2,4- " 650 nma 0,187 2,5 " 650 nma 0,231 2,6 " 630 n 0,193 -30- Exemple 8 Dosage de la LAP avec la L-leucyl-4-N,N- diéthylaminoaniline, un coupleur (1-naphtol-2-sulfonate, phénol, 2,3-diméthylphénol, 2,4-diméthylphénol, 2,5- diméthylphénol ou 2,6-diméthylphénol) et l'ascorbate- oxydase: On prépare une solution substrat contenant 2 mmoles de L-leucyl-4-N,Ndiéthylaminoaniline.2HCl et un coupleur (1-naphtol-2-sulfonate de potassium, phénol, 2,3-diméthylphénol, 2,4-diméthylphénol, 2,5- diméthylphénol ou 2,6-diméthylphénol) dans du tampon phosphate 0,1 M (pH 7,0). On ajoute 100/ul (130 U) d'une solution d'ascorbate-oxydase provenant de la chayotte (Sechium edule) et 501ul de sérum (LAP: 879 unités G-R/ml) et on incube & 37 C. Après 10 mi- nutes, on mesure l'absorption du pigment formé à sa longueur d'onde d'absorption maximale. Les résultats figurent dans le tableau 2. Tableau 2 Coupleur Absorption Densité maximale optique (DO) 1-naphtol-2-sulfonate 655 nm 0,411 Phénol 670 nm 0,347 2 3-diméthylphénol 630 nm 0,356 2,4- " 630 nm 0,267 2,5- " 650 nm 0,222 2,6- " 650 nm 0,427 Exemple 9 Dosage de la LAP avec le L-leucyl-4-N,N-dimé- thylaminoanilide, le 1-naphtol-2-sulfonate et la lac- case: On reprend l'exemple 5 en remplaçant le L- leucyl-4-N,N-diéthylaminoanilide.2HCl par le L-leucyl- -31 - 4-N,N-diméthylaminoanilide.2HCl et en ajoutant du sérum (LAP: 879 unités G-R/ml), le reste du mode opératoire étant le même que dans l'exemple 5. Le maximum d'absorption du colorant formé est de 650 nm et on mesure l'absorption à chaque moment de réaction à 650 nm. Les résultats sont illustrés par la figure 10. Comme le montre la figure 10, on peut doser l'activité de la LAP selon le procédé de l'invention. Exemple 10 Dosage de la LAP avec le L-leucyl-4-N,N- diméthylaminoanilide, le phénol et la laccase: On reprend le mode opératoire de l'exemple 6 en remplaçant le L-leucyl-4-N,Ndiéthylaminoanilide.2HC1 par le L-leucyl-4-N,N-diméthylaminoanilide.2HCl en opé- rant ensuite comme dans l'exemple 6. La longueur d'onde d'absorption maximale du colorant formé est à 655 nia. L'absorption pour chaque moment de réaction est illus- trée par la figure 11. Comme le montre la figure 11, le dosage de la LAP selon l'invention est excellent. Exemple 11 Dosage de la LAP avec le L-leucyl-3,5-dibromo- 4-hydroxyanilide, le 1-naphtol-2-sulfonate et l'ascor- bate-oxydase: On prépare une solution substrat contenant 2 mmoles de Lleucyl-3,5-dibromo-4-hydroxyanilide.2HCl et 0,5 mmole de 1-naphtol-2sulfonate de potassium dans du tampon phosphate 0,1 M (pH 7,0). On ajoute à 2 ml de solution substrat 20,1 de solution contenant 130 U d'ascorbateoxydase et de l'arylamidase (Boehringer, 1000 unités G-R/ml) et on incube à 37 C. Pour chaque moment de réaction, on mesure l'absorption à 630 nma du colorabt formé. Les résultats sont illustrés par la fi- gure 12. Comme le montre la figure 12, le procédé de dosage de l'invention constitue un excellent dosage de -32- la LAP et un dosage cinétique est possible car la colo- ration apparaît dès le début de la réaction de la LAP. La courbe d'absorption du colorant est illustrée par la figure 13. Exemple 12 Dosage de la LAP avec le L-leucyl-3,5-dibromo- 4-hydroxyanilide, le 1-naphtol-2-sulfonate, 1'ascorbate- oxydase ou la laccase: On introduit 1,0 ml de solution substrat pré- parée comme dans l'exemple 11 dans la cuve de réaction (volume intérieur: 1 ml) munie d'une électrode & oxy- gène et préchauffée à 37eC. On ajoute 100/ul d'une so- lution contenant de l'ascorbate-oxydase (350 U) et de l'arylamidase (1000 unités G-R/ml) et on incube à 37 0. On mesure la quantité d'oxygène consommée à chaque instant avec l'électrode à oxygène. Les résultats sont illustrés par la figure 14 qui montre que le dosage peut être effectué de façon avantageuse avec une électrode à oxygène. Dans la même expérience, on remplace l'ascor- bate-oxydase par la laccase (250 U) et on obtient d'ex- cellents résultats comme le montre la figure 15. Exemple 13 Dosage de la LAP avec le L-leucyl-3,5-dibromo- 4-hydroxyanilide, un coupleur (phénol, 2,5-diméthyl- phénol) et la laccase: Dans le mode opératoire de l'exemple 11,, on remplace le 1-naphtol-2-sulfonate par le phénol (0,5 mmole) ou le 2,5-diméthylphénol (0,5 mmole) pour préparer une solu- tion substrat. On ajoute à 2 ml de la solution substrat 201ul d'une solution contenant de la laccase (330 U) et de l'arylamidase (1000 unités G-R/ml) et on incube à 3?7C pendant 10 minutes. On mesure l'absorption du colorant formé à la longueur d'onde d'absorption maxi- male. Les résultats figurent dans le tableau 3. -33- Tableau 3 Coupleur Longueur d'onde Densité d'absorption maximale optique (DO) Phénol 610 nma 0,160 2,5-diméthylphénol 585 nma 0,452 Exemple 14 Dosage de la LAP avec le L-leucyl-3,5-dibromo- 4-hydroxyanilide, le phénol et la tyrosinase: On prépare une solution substrat contenant 0,25 mmole de L-leucyl-3,5-dibromo-4-hydroxyanilide. HC1 et 0,5 mmole de phénol dans du tampon phosphate 0,1 H à pH 7,0. On ajoute à 2 ml de solution substrat 100/ul de solution de tyrosinase (300 U) et 20 1ul d'arylamidase (1000 unités G-R/ml) et on incube à 37 C pendant 10 mi- nutes. On mesure l'absorption du colorant formé à sa longueur d'onde d'absorption maximale de 610 nma -0 (D0610 = 0,158). On peut doser la LAP avec un bon résul- tat. Exemple 15 Dosage de la LAP avec le L-leucyl-2-méthyl-4- aminoanilide, le 1-naphtol-2-sulfonate et la laccas: On prépare une solution substrat contenant 2 mmoles de L-leucyl-2-méthyl-4-aminoanilide. 2HCl et 0,5 mmole de 1-naphtol-2-sulfonate de potassium dans du tampon phosphate (pH 7,0). On ajoute à 2 ml de la solution substrat 100,ul de solution de laccase (330 U) et 501ul de solu- ! tion d'arylamidase (1000 unités G-R/ml) et on incube à 37 C pendant 30 minutes. On mesure l'absorption du pig- ment formé à sa longueur d'onde d'absorption maximale de 565 nma (D0565 = 0,143). -34- Exemple 16 Dosage de la LAP avec le L-leucyl-4-aminoani- lide, le 1-naphtol-2-sulfonate et la laccase: On prépare une solution substrat contenant 2,5 mmoles de L-leucyl-4-aminoanilide.2HCl et 0,5 mmole de 1-naphtol-2-sulfonate de potassium dans du tampon phosphate 0,1 M (pH 7,0). On ajoute à 2 ml de la solution substrat pl de solution de laccase (330 U) et 50/ul de solu- tion d'arylamidase (1000 unités G-R/ml) et on incube à 37 C pendant 30 minutes. On mesure l'absorption du co- lorant formé à sa longueur d'onde d'absorption maximale de 565 nm (D0565 = 0,143). Exemple 17 Dosage de la LAP avec le L-leucyl-4-N,N-di- propylanilide, l'acide 1-naphtol-2-sulfonique et la laccase: On prépare une solution substrat contenant 2 mmoles de L-leucyl-4-N,Ndipropylaminoanilide.2HCl et 0,5 mmole de p-naphtol-2-sulfonate de potassium dans du tampon phosphate 0,1 M (pH 7,0). On ajoute à 2 ml de la solution substrat 100/ l de solution de laccase (330 U) et 50 ul de solution d'arylamidase (1000 unités G-R/ml) et on incube à 37 C pendant1O minutes. On me- sure l'absorption du colorant formé à sa longueur d'onde d'absorption maximale de 650 nm (D0650 = 0,430). Exemple 18 Dosage de la LAP avec le L-leucyl-3,5-dichlo- ro-4-hydroxyanilide, le 1-naphtol-2-sulfonate ou le phénol et la laccase: On prépare une solution substrat contenant 2 mmoles de L-leucyl-3,5dichloro-4-hydroxyanilide.HCl et 0,5 mmole de 1-naphtol-2-sulfonate de potassium dans du tampon phosphate 0,1 M (pH 7,0). On ajoute à 2 ml de la solution substrat 100/l de solution de laccase -35- (330 U) et 20/ul de solution d'arylamidase (1000 uni- tés G-R/ml) et on incube à 37 C pendant 10 minutes. On mesure l'absorption du colorant formé à 630 nm (D0630 = 0,535). On remplace le 1-naphtol-2-sulfonate par 0,5 mmole de phénol et on mesure le colorant formé à 610 nm (D0610 = 0,111). Exemple 19 Dosage de la LAP avec le L-leucyl-4-N-éthyl- N-hydroxyéthylaminoanilide, le 2,6-dibromophénol et la laccase: On ajoute 100.u1 de solution de laccase (330 U) et 20/ul de solution d'arylamidase (1000 unités G-R/ml) à 2 ml de solution substrat contenant 2 mmoles de Lleucyl-4-N-éthyl-N-hydroxyéthylaminoanilide.2HCl et 0,5 mmole de 2,6-dibromophénol dans du tampon phos- phate 0,1 M (pH 7,0) et on incube à 3700 C pendant 5 mi- nutes. On mesure l'absorption du colorant formé à 705 nm (DO705 = 1,47). Exemple 20 Dosage de la LAP avec le L-leucyl-anilide, la 3,5-dibromo-4hydroxyaniline et la laccase: Dans l'exemple 19, on remplace le L-leucyl- 4-N-éthyl-N-hydroxyéthylaminoanilide.2HCl par 2 mmoles de L-leucylanilide.HCl. On mesure l'absorption du colo- rant formé à sa longueur d'onde d'absorption maximale de 655 nm (D0655 = 0,178). Exemple 21 Dosage de la LAP avec le L-leucyl-2-éthylani- lide, la 3,5-dibromo-4-hydroxyaniline et la laccase: Dans l'exemple 19, on remplace le L-leucyl- 4-N-éthyl-N-hydroxyéthylaminoanilide.2HCl par 2 mmoles de L-leucyl-2éthylanilide.HCl. On mesure l'absorption du colorant formé à sa longueur d'onde d'absorption maximale de 675 nm (D0675 = 0,428). -56- Exemple 22 Dosage de la LAP avec le L-leucyl-2-carboxy- anilide, la 3,5-dibromo-4-hydroxyaniline ou la 4-N,N- diéthylaminoaniline et la laccase: On ajoute 100/il de solution de laccase (330 U) et 50/ul de solution d'arylamidase (1000 unités G-R/ml) à la solution substrat contenant 2 mmoles de L-leucyl-2-carboxyanilide.HCl et 0,5 mmole de 3,5- dibromo-4-hydroxyaniline dans du tampon phosphate 0,1 M à pH 7,0 et on incube à 37 C pendant 10 minutes. On me- sure l'absorption du colorant formé à sa longueur d'onde d'absorption maximale de 645 nm (D0645 = 0,397). Dans le mode opératoire ci-dessus, on remplace la 3,5-dibromo-4-hydroxyaniline par 0,5 mmole de 4-N,N- diéthylaminoaniline. On mesure l'absorption du colorant formé à sa longueur d'onde d'absorption maximale de 690 nm (D0690 = 0,613). Exemple 25 Dosage de-la LAP avec des substrats synthé- tiques et des coupleurs divers et la laccase: Substrats synthétiques pour le dosage de la LAP: (A) L-leucyl-3,5-dibromo-4-hydroxyanilide.HC1; (B) Lleucyl-4-N,N-diéthylaminoanilide.2HCl; ou (C) L-leucyl-4-N,N-diméthylaminoanilide.2HC1. Coupleurs: (1) N-éthyl-N-hydroxyéthylaniline; (2) 2,6-dibromophénol; (3) 2,4-dichlorophénol; (4) 2,6-diméthoxyphénol; (5) aniline; (6) m-toluidine; (7) acide anthranilique; (8) m-méthylphénol; (9) o-carboxyméthylphénol; 37- (10) N-éthyl-N-hydroxyéthyl-m-toluidine; (11) N,N-diméthyl-mtoluidine; (12) o-éthylaniline; (13) a-naphtol; (14) N,N-diméthylaniline; (15) N,N-diéthylaniline; (16) o-chlorophénol; (17) m-chlorophénol; (18) méthylphénol; (19) o-méthoxyphénol; (20) 4-chloro-m-phénylènediamine; (21) 2-méthyl-6-chlorophénol; (22) 2-chloro-5-méthylphénol; (23) 4-chloro-1naphtol; (24) acide 1-naphtol-2-carboxylique. On prépare une solution substrat contenant 2 mmoles de substrat synthétique et 0,5 mmole de cou- pleur dans du tampon phosphate 0,1 M (pH 7,0). On ajoute & 2 ml de la solution substrat 100p1 de solu- tion de laccase (330 U) et 50/il de solution d'aryl- amidase (1000 unités G-R/ml) et on incube à 37 C pen- dant 10 minutes. On mesure l'absorption du colorant formé à sa longueur d'onde d'absorption maximale. Les résultats figurent dans le tableau 4. -38- Tableau 4 Substrat synthétique de la LAP Coupleur ( (i) (B) (C) (1) 0DO705 = 3,712 D730 = 1,849 (2) D0670 = 1,031 DO705 = 0,187 D0700 = 0,168 (3) D0660 = 0,508 DO0695 = 0,259 (4) D0580 = 0,567 0635 = 0,157 (5) D0655 = 0,45 D0690 = 0,301 D0690 = 0,271 (6) D0675 = 0,396 D0710 = 0,260 D0700 = 0,234 * (7) D0645 = 0,401 D0690 = 0,244 D0690 = 0,219 (8) DO 06 = 0,495 DO665 = 0,201 J00 0I 6 = 03201 9 9) DO0590 = 0,693 D0650= 0,329 I (10) DO0715 = 0,421 DO745 = 3,79 (11) D 0740 = 3,54 (12) DO675 = 1 08 * D0700 = 2,05 (15) 67 (13) DO0575 = 0,338 DO640 = 0,157 (14) 0700= 0,261 Do0730 = 1,01 D0725 = 0,907 (15) DO705 =0,536 DO70 = 1,22 j 730 1 (16) D0650 = 0,698 D 0690 = 0,449 D0680 = 0,404 (17) D0650 = 0,495! D685 = 0,203 (18) DO605 = 0,338 (19) DO590 = 0,468 (20) D0630 = 0,842 (21) DO610 0,63 22) D0635 = 0,567 (23) D0580 = 0,356 DO640 = 0,05 (24) D05 0,419 -39- Exemple 24 Dosage de la e -GTP avec le -L-glutamyl-4- N,N-diéthylaminoanilide, le 1-naphtol-2-sulfonate et la laccase: On prépare une solution substrat contenant mmoles de '-L-glutamyl-4-N,Ndiéthylaminoanilide, mmoles de glycylglycine et 0,5 mmole de 1-naphtol- 2-sulfonate de potassium dans du tampon phosphate à mmoles (pH 8,0). On ajoute à 2 ml de la solution substrat 100 Pl de laccase (1000 U/ml) et 50OIl de sérum ( Y-GTP: 416 mU/ml) et on incube à 37 C. On mesure à 655 nm à chaque moment de réaction l'absorption du colo- rant formé. Les résultats sont illustrés par la figure 16. On dose un sérum (t -GTP: 105 mU/ml) et les résul- tats sont illustrés par la figure 17. Comme le montrent les figures16 et 17, le procédé de l'invention permet un excellent dosage de l'activité de la --GTP et le mélange réactionnel se colore dès le début de l'action de la Y -GTP, si bien qu'un dosage cinétique est pos- sible. La courbe d'absorption du colorant formé est illustrée par la figure 18. Exemple 25 Dosage de la #-GTP avec le Y-L-glutamyl-4- N,N-diéthylaminoanilide, le 1-naphtol-2-sulfonate et la laccase: On introduit I ml de solution substrat de l'exemple 24 dans la cuve de réaction (volume intérieur: 1 ml) munie d'une électrode à oxygène et préchauffée à 37 C. On ajoute 10,1l d'une solution contenant 200 U de laccase et du sérum ( '-GTP: 416 mU/ml) puis on in- cube à 37 C. On mesure la quantité d'oxygène consommée avec l'électrode à oxygène. Le taux de consommation d'oxygène est illustré par la figure 19 qui montre que l'activité de la '-GTP peut être mesurée de façon avan- tageuse. -40- Exemple 26 Dosage de la N,N-diéthylaminoanilide, le 1-naphtol-2-sulfonate et 1 'ascorbateoxydase: On prépare 2 ml d'une solution substrat comme dans l'exemple 24. On ajoute 100P1ul de solution d'ascorbate-oxydase (100 U) et 50/ul de sérum ( minutes elle est D0655 = 1,895. Exemple 27 Dosage de la y-GTP avec le Y-L-glutamyl-3,5- dichloro-4-hydroxyanilide, le 1-naphtol-2-sulfonate et la laccase ou la tyrosinase: - On prépare une solution substrat contenant mmoles de Y-L-glutamyl-3,5dichloro-4-hydroxyanilide, 100 mmoles de glycylglycine et 0,5 mmole de 1-naphtol- 2-sulfonate de potassium dans du tampon borate 50 mM (pH 7,1). On ajoute 100 ul de solution de laccase (100 U) et 50 l de sérum ( '-GTP: 416 mU/ml) à 2 ml de la solution substrat et on incube à 37 C pendant 10 mi- nutes. On mesure l'absorption du colorant formé à sa longueur d'onde d'absorption maximale de 630 nam (DO63o = 1,044). On remplace la laccase par 100/l de solution de tyrosinase (100 U) dans l'expérience ci-dessus et on opère de la même façon que ci-dessus. On obtient comme résultat D0630 = 1-,042. Exemple 28 Dosage de la i-GTP avec des substrats synthé- tiques de la Y-GTP et des coupleurs divers et de l'as- corbate-oxydase: -41- Substrats synthétiques: (A) /-L-glutamyl-4-N,Ndiéthylaminoanilide; (B) '-L-glutamyl-4-N,N-diméthylaminoanilide; (C) ' L-glutamyl-4-N,N-dipropylaminoanilide; (D) -L-glutamyl-3,5-dibromo-4hydroxyanilide. Coupleurs: (1) 1-naphtol-2-sulfonate de potassium; (2) 2, 5-diméthylphénol; (3) 2,6-dibromophénol; (4) 2,6-diméthoxyphénol; (5) N,Ndiéthylaniline; (6) N-éthyl-N-hydroxyéthylaniline; (7) N,N-diméthyl-mtoluidine; (8) o-éthylaniline; (9) m-chlorophénol; (10) o-méthylphénol; (11) o-méthoxyphénol; (12) a-naphtol; (13) phénol. On prépare une solution substrat contenant mmoles de substrat, 100 mmoles de glycylglycine et 0,5 mmole de coupleur dans du tampon borate 50 mE (pH 8,0). On ajoute à 2 ml de la solution substrat 1001ul de solution d'ascorbate-oxydase (100 U) et 501il de sérum ( 1-GTP: 416 mU/ml) et on incube à 37 C pendant 5 minutes. On mesure l'absorption du colorant formé à sa longueur d'onde d'absorption maxi- male. Les résultats figurent dans le tableau 5. Tableau 5 Coupleur __________________3Substrat synthétique (1) DO650 = 0,978 D0650= 0,902 DO650 = 0,803 (2) 585 = (5) DO705 0,568 DO70O - 0,379 DO0670 = 1,120 (4) DO635 = 0,313 DO0595 = 0,322 DO0580 0,511 (5) DO730,- 1,362 DO0725 = 1,404 (6) DO0730 - 1,627 DO705 1,907 (7) D0740 = 2,426 (8) DO0700 = 1,871 DO0675 = 0,826 (9) DO0695 0,453 D0655 - 0,495 (10) D0650 = 0,551 DO590 = 0,622 (11) 00590 = 0,605 (12) DO640 = 0,297 N (13) D0655 = 0,562 DO610 0,717 -43- Exemple 29 Dosage de la LAP avec le L-leucyl-5,5- dichloro-4-hydroxyanilide, le métaperiodate de sodium et le p-xylénol: On prépare une solution substrat contenant mmoles de L-leucyl-3,5-dichloro-4hydroxyanilide.HCl dissous dans du tampon phosphate 0,1 M à pH 7,0. On ajoute 20/ul d'un échantillon de sérum provenant d'un malade (LAP: 236 unités G-R) à 1 ml de la solution substrat, on mélange soigneusement et on incube à 37'C pendant 20 minutes. On ajoute pour produire une colora- tion 3 ml de solution de réactif oxydant contenant 2 mmoles de métaperiodate de sodium et 10 mmoles de p-xylénol dans de l'hydroxyde de potassium 0,2 N. On mesure l'absorption du colorant formé à 585 nm et on obtient D0585 = 0,18. Exemple 30 Dosage de la LAP avec le L-leucyl-3,5-dibromo- 4-hydroxyanilide, le métaperiodate de sodium et le p- xylénol: - On prépare une solution substrat contenant mmoles de L-leucyl-3,5-dibromo4-hydroxyanilide.HCl dissous dans du tampon phosphate 0,1 M (pH 7,0). On ajoute 20/ul d'un échantillon de sérum provenant d'un malade (LAP: 250 unités G-R) à 1 ml de la solution substrat, on mélange soigneusement et on incube à 37 0 pendant 20 minutes. On ajoute pour former la couleur 3 ml d'une solution de réactif oxydant contenant 2 mmo- les de métaperiodate de sodium et 10 mmoles de p-xylé- nol dans de l'hydroxyde de potassium 0,2 N. On mesure l'absorption du colorant à 585 nm (D0O585 = 0,18). Exemple 31 Dosage de la 3,5-dichloro-4-hydroxyanilide, le métaperiodate de so- -44- dium et le p-xylénol: On prépare une solution substrat contenant mmoles de e-L-glutamyl-3,5-dichloro-4-hydroxyanilideet 1o00 mmoles de glycylglycine dans du tampon Tris-HCl 5 mM (pH 8,0). On ajoute à 0,5 ml de la solution subs- trat 10/ul d'échantillon de sérum ( J-GTP: 130 mU/ml) , on mélange soigneusement et on incube à 37eC pendant minutes. On ajoute pour former une coloration 2 ml de solution de réactif oxydant contenant 2 mmoles de métaperiodate de sodium et 10 mmoles de p-xylénol dans de l'hydroxyde de potassium 0,2 N. On mesure l'absorp- tion à 585 nm (D0585 = 0,112). Exemple 32 Dosage de la dibromo-4-hydroxyanilide, le métaperiodate de sodium et le p-xylénol: On prépare une solution substrat contenant mmoles de Y -L-glutamyl-3,5dibromo-4-hydroxyanilide et 100 mmoles de glycylglycine dissous dans du tampon Tris-HCl 50 mM (pH 8,0). On ajoute à 0,5 ml de la so- lution substrat 10 1l d'échantillon de sérum de malade ( Y-GTP: 130 mU/ml) et on incube à 37 C pendant minutes. On ajoute pour former la coloration 2 ml de solution de réactif oxydant contenant 2 mmoles de métaperiodate de sodium et 10 mmoles de p-xylénol dans de l'hydroxyde de potassium 0,2 N. On mesure l'absorp- tion à 585 nm (D0585 = 0,140). Exemple 33 Dosage de la LAP avec le L-leucyl-3,5-dibromo- 4-hydroxyanilide, le métaperiodate de sodium et le 2- chloro-5-méthylphénol: On prépare une solution substrat contenant 2 mmoles de L-leucyl-3,5-dibromo-4-hydroxyanilide.HCl dissous dans du tampon phosphate 0,1 M (pH 7,0). On ajoute à I ml de solution substrat 20, ,/ul d'échantillon -45- de sérum de malade (LAP: 250 unités G-R) et on incube à 370 C pendant 20 minutes. On ajoute pour former une coloration 3 ml de solution de réactif oxydant conte- nant 2 mmoles de métaperiodate de sodium et 5 mmoles de 2-chloro-5méthylphénol dans de l'hydroxyde de potas- sium 0,2 N. On mesure l'absorption du colorant & 635 nm (DO635 = 0,33). Exemple 34 Dosage de la -GTP avec le -L-glutamyl- 3,5-dibromo-4-hydroxyanilide, le métaperiodate de sodium et le 2-chloro-5méthylphénol: On prépare une solution substrat contenant mmoles de -Lglutamyl-3,5-dibromo-4-hydroxyanilide et 100 mmoles de glycylglycine en solution dans du tam- pon Tris-HCl 50 mM (pH 8,0). On ajoute à 0,5 ml de so- lution substrat 10,ul d'échantillon de sérum de malade ( -GTP: 130 mU/ml) et on incube à 37 C pendant 20 mi- nutes. On ajoute pour former une coloration 2 ml de ré- actif oxydant contenant 2 mmoles de métaperiodate de sodium et 5 mmoles de 2-chloro-5-méthylphénol dans de l'hydroxyde de potassium 0,2 N. On mesure l'absorption à 635 nm pour obtenir une D0635 = 0,214. Exemple 55 Dosage de la LAP avec le L-leucyl-3,5-dibromo- 4-hydroxyanilide et le pentacyanoaminoferroate de so- dium: On ajoute 60 ml de peroxyde d'hydrogène à 0,3 % à 2 g de pentacyanoaminoferroate de sodium dis- sous dans 20 ml d'eau et on ajoute de plus 20 ml de so- lution à 10 % de bicarbonate de sodium. On ajoute 4 g de Dextran T-10 (Pharmacia) pour préparer une solution de coloration non diluée. On prépare une solution de co- loration et d'arrêt de la réaction non diluée par addi- tion de 50 ml de tampon citrate 0,2 M (pH 4,5) conte- nant 1 % de chlorure de sodium et 0,5 % de Tween 80 à I ml de la solution de coloration non diluée. On ajoute 20 1ul d'un échantillon de sérum provenant d'un malade (LAP: 250 unités G-R) à 5 mmoles de L-leucyl-3,5-dibromo-4-hydroxyanilide.HCl dissous dans 1 ml de tampon phosphate 0,1 M (pH 7,0), on mé- lange soigneusement et on incube à 37 C pendant 20 mi- nutes. On ajoute 5 ml de la solution de coloration et d'arrêt de la réaction et on laisse reposer à la tempé- rature ordinaire pendant 20 minutes pour qu'une colora- tion se forme. On mesure l'absorption à 700 nm pour ob- tenir une D0700 = 0,21. Exemple 36 Dosage de la t-GTP avec la -L-glutamyl- 3,5-dibromo-4-hydroxyanilide et le pentacyanoamino- ferroate de sodium: On ajoute 20/ul d'échantillon de sérum de malade ( GTP: 130 mU/ml à I ml d'une solution de mmoles de i -L-glutamyl-3,5dibromo-4-hydroxyanilide et 100 mmoles de glycylglycine dans du tampon Tris-HOl 50 mM (pH 8,0), on mélange soigneusement et on incube à 37 C pendant 20 minutes. On arrête la réaction et on forme une coloration comme ans l'exemple 35 pour ob- tenir une absorption de DO700 = 0,132. Exemple 57 Dosage de la LAP avec le L-leucyl-3,5-dibromo- 4-hydroxyanilide et le pentacyanoacoferriate de sodium: On prépare une solution substrat contenant mmoles de L-leucyl-3,5-dibromo-4hydroxyanilide.HCl en solution dans du tampon phosphate 0,1 M (pH 7,0). On ajoute 201 d'échantillon de sérum de malade (LAp: 250 unités G-R) à 1 ml de la solution substrat, on mé- lange soigneusement et on incube à 370 C pendant 15 mi- nutes. On ajoute 4 ml d'une solution préparée par addi- tion de 90 ml d'une solution 0,2 M d'EDTA.2Na (pH 11) dans 30 ml de pentacyanoacoferriate de sodium à 1 % et -47- on incube à 37 0C pendant 15 minutes. On mesure l'absorp- tion à 730 nm pour obtenir une D0730 = 0,232. On prépare le pentacyanoacoferriate de sodium à 1 % par irradiation par les ultraviolets pendant 15 minutes d'une solution à 1 % de nitroprussiate de sodium Na[Fe(CN)5NO] et à 1 % de carbonate de sodium. Exemple 38 Etablissement d'une courbe d'étalonnage de la -GTP avec le Y-L-glutamyl-3,5-dibromo-4-hydroxy- anilide: On prépare une solution substtat contenant 5 mmoles de y-L- gl1utamyl-3,5-dibromo-4-hydroxyanilide et 100 mmoles de glycylgly- cine dans du tampon Tris-HC1 50 mM (pH 8,0). On ajoute à 0,5 ml de la solution substrat 10u1 de sérum conte- nant de la 1-GTP (74-370 mU/ml), on mélange soigneuse- ment et on incube à 37 C pendant 20 minutes. On ajoute une solution de réactif oxydant contenant 2 mmoles de métaperiodate de sodium et 10 mmoles de p-xylénol dans de l'hydroxyde de potassium 0,2 N pour produire une coloration. On mesure l'absorption du colorant formé à 585 nm. Les résultats sont illustrés par la figure 20 qui montre que l'on peut mesurer de façon avantageuse la i-GTP sérique. Exemple 39 Dosage de la LAP avec le L-leucyl-3,5-dichlo- ro-4-hydroxyanilide ou le L-leucyl-3,5-dibromo-4-hydro- xyanilide, le 2,5-diméthylphénol et l'ascorbate-oxydase: On prépare une solution substrat contenant 2 mmoles de L-leucyl-3,>-dichloro-4hydroxyanilide.HCl ou 2 mmoles de L-leucyl-3,5-dibromo-4-hydroxyanilide. HC1 et 2 mmoles de 2,5-diméthylphénol dans du tampon phosphate 0,1 M (pH 7,0). On ajoute à 2 ml de la solu- tion substrat 130 U d'ascorbate-oxydase et 20O1l d'é- chantillon de sérum de malade (LAP: 1113 unités G-R/ml) et on incube à 37 C pendant 10 minutes. On mesure l'ab- -48- sorDtion à la longueur d'onde d'absorption maximale. Les résultats sont les suivants. L-leucyl-3,5-dichloro-4-hydroxyanilide: D0585 = 0,586 L-leucyl-3,5dibromo-4-hydroxyanilide: D0585 = 0,756 Exemple 40 Dosage de la LAP avec le L-leucyl-3,5-di- chloro-4-hydroxyanilide, le 2,5-diméthylphénol et la laccase: On prépare une solution substrat contenant 2 mmoles de L-leucyl-3,5-dichloro-4hydroxyanilide.HCl et 2 mmoles de 2,5-diméthylphénol dans du tampon phos- phate 0,1 M (pH 7,0). On ajoute à 2 ml de la solution substrat 209l d'une solution contenant de la laccase (330 U) et de l'arylamidase (1000 unités G-R/ml) et on incube à 37 C pendant 10 minutes. L'absorption à 585 nm est DO585 = 0,386. Exemple 41 Dosage de la dichloro-4-hydroxyanilide, le 2,5-diméthylphénol et l'ascorbate-oxydase: On prépare une solution substrat contenant mmoles de '-L-glutamyl-3,5dichloro-4-hydroxyanilide, mmoles de glycylglycine et 0,5 mmole de 2,5-dimé- thylphénol dans du tampon borate 50 mM (pH 8,0). On ajoute à 2 ml de la solution substrat 100/ul d'ascor- bate-oxydase (100 U) et 50p1 de sérum ( i-GTP: 416 mU/ml) et on incube à 370C pendant 5 minutes. L'ab- sorption à 585 nm est D0585 = 0,57. Exemple 42 Dosage de la -GTP avec le Y-L-glutamyl-3,5- dichloro-4-hydroxyanilide ou le '-L-glutamyl-3,5- dibromo-4-hydroxyanilide, le 2,5-diméthylphénol et la laccase: On prépare une solution substrat contenant 5 mmoles -L-glutamyl-3,5-dichloro-4hydroxyanilide -49- ou 5 mmoles de '-L-glutamyl-3,5-dibromo-4-hydroxyanili- de, 100 mmoles de glycylglycine et 0,5 mmole de 2,5- diméthylphénol dans du tampon borate 50 mM (pH 8,0). On ajoute à 2 ml de chaque solution substrat 100O1 de so- lution de laccase (100 U) et 50/ul de sérum ( g-GTP: 416 mU/ml) et on incube à 37 C pendant 5 minutes. On mesure l'absorption du colorant formé. Les résultats sont les suivants: -L-glutamyl-3,5-dichloro-4hydroxyanilide: DO585 = 0,476 -L-glutamyl-3,5-dibromo-4-hydroxyanilide: DO585 =,526 R E V E N D I C A T I ONS 1.- Procédé de dosage d'une activité enzymatique qui comprend le traitement d'un amide de formule: R2 R3 R -NH.. R4 A R6 R5 dans laquelle R1 est un radical L-leucyle ou e-L- glutamyle, R2, R3, R4, R5 et R6 sont un atome d'hydrogène ou d'halogène ou un radical alkyle inférieur, alcoxy inférieur, amino, amino substitué, hydroxy, carboxy ou sulfo, et R5 et R6 peuvent constituer ensemble un cycle carboné, ou un sel soluble dans l'eau correspondant, avec une peptidase, le traitement de l'amine ainsi libérée de formule: R8 R R7 R4 R12 R5 dans laquelle R2, R3, R4, R5 et R6 ont les mêmes significations que précédemment, avec une oxydase qui consomme de l'oxygène et forme un colorant en présence d'un coupleur de formule: R8 R 8 9 R7 R8R 7 10 R1 Ril Ril dans laquelle R7 est un atome d'hydrogène ou un radical amino, amino substitué ou hydroxy, R8, R9, Ro10, Rll et R12 sont un atome d'hydrogène ou d'halogène ou un radical alkyle inférieur, alcoxy inférieur, amino, amino substitué, hydroxy, carboxy ou sulfo, et Rll et R12 peuvent éventuel- lement former ensemble un cycle carboné ou R7 peut éventuellement être un atome d'hydrogène lorsqu'au moins un de R8, R 9, Rio, Rll et R12 est un radical amino, amino substitué ou hydroxy, puis la mesure quantitative des changements détectables. 2.- Procédé de dosage selon la revendication 1, dans lequel l'oxydase est la laccase, l'acide ascorbique- oxydase ou la tyrosinase. 3.- Procédé de dosage selon la revendication 1, dans lequel la peptidase est la leucine-aminopeptidase. 4.- Procédé de dosage selon la revendication 1, dans lequel la peptidase est la -glutamyl-transpeptidase.