FR 2567523 A1 19860117 FR 8411101 A 19840712 POLYNUCLEOTIDES LIES DE FACON COVALENTE A UN SUPPORT SOLIDE, ET PROCEDE POUR LEUR OBTENTION L'invention concerne des polynucléotides, plus particulièrement des fragments d'oligonucléotides, fixés de façon covalente à un support solide, un procédé de préparation de ces polynucléotides - ou oligonucléotides - supportés, des produits intermédiaires utiles pour leur fabrication, des procédés pour leur obtention, ainsi que leurs applications. L'invention concerne plus particulièrement encore des techniques permettant la production de sondes du type sus-indiqué, mettant en oeuvre des séquences d'acides nu- cléotidiques de petite taille, notamment des oligonucléo- tides pouvant comporter moins de 50 ou même moins de 20 nucléotides, ces sondes étant supportées par un support solide ou fixées à celui-ci. Les techniques de détection du genre sus-indiqué, basées sur l'hybridation entre une séquence déterminée de nucléotides utilisés en tant que sondes et d'une séquence de nucléotides complémentaires de celles de la sonde éven- tuellement contenues dans une composition contenant des acides nucléiques, sont maintenant bien connues du spécia- liste. Ces techniques restent cependant difficiles à mettre en oeuvre et ne sont susceptibles de conduire à des résultats reproductibles qu'entre les mains de spécialis- tes très entraînés, et ce plus particulièrement lorsque c'est la sonde qui est fixée à un support et que la compo- sition d'acides nucléiques contenant éventuellement le fragment de nucléotides à détecter est amenée et maintenue au contact desdites sondes dans des conditions permettant l'hybridation. La fabrication de sondes supportées fait en géné- ral intervenir des réactions de fixation des séquence- sondes au support. Ces fixations, éventuellement renfor- cées par l'usage de réactifs chimiques (par exemple carbo- diimide ou réactifs de diazotation) s'effectuent cependant en général en des points ou sites répartis au hasard le long des séquences nucléotidiques en cause. Il en résulte cependant que seules les parties non fixées de la sonde sont exposées, dans des conditions permettant leur hybridation éventuelle, avec les séquences nucléotidiques complémentaires éventuellement contenues dans une composition. On comprendra par conséquent que les modes de fi- xation classiques cessent rapidement d'être applicables à des séquences sondes de faible longueur. L'invention a pour but de remédier à ces difficul- tés et de fournir des polynucléotides, de préférence des oligonucléotides supportés qui ne présentent plus ces in- convénients. En particulier, l'invention a pour but de fournir des séquences nucléotidiques supportées de très faible taille, celles-ci pouvant soit elles-mêmes interve- nir dans les réactions d'hybridation avec des séquences nucléotidiques complémentaires dans des conditions clas- siques, soit servir d'amorces à la fixation de séquences plus longues à ce même support. L'invention concerne également un procédé d1ob- tention de ces polynucléotides supportés, procédé qui ré- sulte de l'adaptation appropriée des techniques de syn- thèse d'oligonucléotides en phase solide, par exemple les méthodes dites aux phospho-triesters ou aux phosphorami- dites, dans des conditions telles que l'on puisse en dé- finitive disposer d'oligonucléotides non protégés, carac- térisés par des séquences déterminées, liés de façon co- valente à un support solide. L'invention concerne tout d'abord une molécule supportée qui, en quelque sorte, peut être considérée comme l'amorce possible de la réalisation d'un oligonu- cléotide ou polynucléotide supporté. Cette molécule supportée comporte dans sa structure au moins un groupe nucléoside ou nucléotide fixé de façon covalente à un sup- port solide, le site de fixation au groupe nucléoside intervenant au niveau de l'hétérocycle entrant dans la constitution dudit groupe nucléoside. Ce mode de liaison laisse alors libre les hydroxyles du sucre et permet de constituer des chaînes oligonucléotidiques (ADN ou ARN) aussi bien dans le sens 3'- 5' que dans le sens 5' - 3'. L'invention concerne en outre les oligonucléotides ou polynucléotides supportés qui notamment peuvent être formés à partir de la susdite molécule supportée, par la mise en jeu des techniques antérieurement connues d'allon- gement de chaînes de nucléotides en phase solide, par exemple dans des conditions qui ont été décrites dans les articles (1) à (6) de la bibliographie figurant à la fin de cette description. On observera cependant qu'en subs- tituant la molécule supportée susdite aux produits résul- tant de l'ancrage d'un premier nucléoside (désoxyribonu- cléoside ou ribonucléoside) sur un support fonctionnalisé approprié dans les procédés d'allongement de la chaîne nucléotidique selon les méthodes classiques, il sera possible au moment de la réalisation des opérations de dé- protection des séquences oligonucléotidiques synthétisées, d'obtenir la séquence nucléotidique ainsi synthétisée li- bre de tout groupe protecteur, mais toujours encore liée de façon covalente au support solide. En cela, le procédé de l'invention se distingue des procédés antérieurs de synthèse d'oligonucléotides en phase solide, dont l'étape finale de déprotection ou élimination des groupes protec- teurs, notamment par un traitement acide ou basique, ou les deux à la fois, implique également l'élimination du support. De préférence, le site de fixation au support du groupe nucléosidique ou du nucléotide terminal de l'oligo- nucléotide ou polynucléotide se situe au niveau du sommet C-4 du cycle pyrimidine ou du sommet C-6 du cycle purine, selon le cas) dudit groupe nucléoside ou dudit nucléotide terminal. De préférence, la fixation covalente desdits grou- pes nucléosides ou nucléotides au support du genre en question se fait par l'intermédiaire d'un bras dont la longueur correspond de préférence à celle d'une chaîne carbonée ayant de 4 à 20 atomes de carbone. Il est clair que la longueur de cette chaîne ne constitue-pas en soi un facteur critique essentiel, si ce n'est qu'un bras trop court serait éventuellement incom- patible avec l'exposition complète ultérieure de. l'oli- gonueléotide supporté à des acides nucléiques contenant une séquence complémentaire de nucléotides venant à leur contact, à l'occasion d'opérations d'hybridation, et que des chaînes trop longues seraient d'une trop grande flexi- bilité pouvant également interférer avec la réalisation d'une hybridation dans des conditions semblables. En particulier, les chaînes risqueraient de se replier. Des molécules supportées préférées de l'invention répondent à la formule générale suivante: X o ' R1. 3' 2' R3 R2 dans lequel: - la lettre N, entourée d'un cercle, représente une base, telle que uracile, méthyl-5-uracile, guanine, xanthine, méthyl-5-cytidine, cytidine, amino-2-adénine, inosine; - la lettre S, entourée d'un cercle, repréente un groupe ribose ou désoxy-2'-ribose avec R1 représentant un groupe OH, phosphate ou encore oligo ou polynucléotide, R2 représentant H ou OH et R3 représentant OH, phosphate ou encore oligo ou polynucléotide, les nombres (2'), (3') et (5') apparaissant sur le schéma-correspondant aux sommets numérotés de façon classique des sucres en question; - la lettre X représente un groupe divalent NH ou O; - la lettre B représente un bras et - la lettre A représente le support solide. Un bras B préféré est constitué par une chaîne carbonée comprenant de préférence de 4 à 20 atomes de carbone, dont certains peuvent le cas échéant être rem- placés par des hétéroatomes tels que O, N ou S. De préférence, le bras est obtenu à partir de toute chaîne bifonctionnelle correspondante. On peut citer par exemple l'éthylène diamine, le diamino 1-6 hexane, le diamino 1-10 décane, la spermine, des diéthylène-glycols ou dialcoylène-glycols. Il est entendu que l'expression "support solide" recouvre tout support qui peut rester insoluble dans au moins un milieu déterminé susceptible de contenir des acides nucléiques en solution. De nombreux supports peu- veht être utilisés. Il s'agit par exemple de polymères, de silice ou de billes de verre, ces supports ayant cepen- dant, le cas échéant, fait l'objet d'un traitement préa- lable (fonctionnalisation), leur conférant des groupements fonctionnels susceptibles d'être mis en jeu dans une réac- tion de fixation d'une molécule distincte, soit directe- ment, soit par l'intermédiaire d'un bras. Des supports de ce type sont disponibles dans le commerce. Il s'agit par exemple des gels du type polyacrylmorpholide, par exemple ceux commercialisés sous la désignation "ENZACRYL K-2". Un procédé préféré pour fabriquer les molécules supportées selon l'invention consiste à faire réagir le nucléoside ou le nucléotide terminal d'un oligonucléotide, dont le sommet en C-4, lorsque la base est constituée par une pyrimidine, ou en C-6 lorsqu'elle est constituée par une purine, a préalablement été activé, avec un support A, de préférence préalablement "fonctionnalisé" par fixation sur celui-ci d'un bras approprié porteur d'une fonction réactive avec le sommet activé de la susdite base, la réaction impliquant alors la réalisation d'une liaison covalente au niveau du sommet susdit et de l'extrémité du bras. Un mode d'activation préféré du sommet approprié de la base comprend la fixation sur ce sommet d'un dérivé hétérocyclique, du type triazole, nitro-triazole, tétra- zole, par exemple selon l'une des techniques décrites dans les références bibliographiques (7), (8) et (9) indiquées à la fin de cette description. Des nucléosides (ou le nu- cléotide terminal d'un oligonucléotide) ainsi activés peu- vent alors être mis en réaction avec un support fonction- nalisé porteur de groupes fonctionnels terminaux NH2, par exemple pour produire la réaction représentée par le sché- ma qui suit: O,4 / I + H2m (CH2) 10 H3 DMT N 0" OBz NH _ (CH2)10 NH Q CH3 DMT O Dans les formules chimiques qui précèdent: - A représente un support solide, - Bz représente un groupe benzoyle et - DMT représente un groupe diméthoxytrityle. - Il va de soi que tout autre type de réaction chimique mettant en jeu l'activation préalable des mêmes sommets des bases hétérocycliques, ou de tout autre groupe éventuellement préalablement fixé sur ces bases, et la ré- action du groupe activé avec le support dans les condi- tions sus-indiquées peut être envisagée. Pour mémoire, on rappellera par exemple les procédés d'activation qui ont été décrits des mêmes sommets des bases hétérocycliques, par l'intermédiaire d'un chlorure acide (références bi- bliographiques (10) et (11)). Le procédé selon l'invention permet donc de réa- liser nucléotide par nucléotide (ou groupe de nucléotides par groupe de nucléotides) des oligonucléotides de synhèse finalement exempts de tout groupe protecteur et liés de façon stable à un support solide. Il a été constaté que les traitements chimiques basiques et acides classiquement utilisés pour la déprotection des séquences oligonucléoti- diques ne modifient pas la stabilité de la séquence nuclé- otidique complètement -déprotégée sur le support. Les sup- ports portant ainsi des séquences hybridables peuvent être mis en oeuvre dans toutes applications mettant en jeu un tel type de réaction. La technique selon l'invention permet donc, non seulement la réalisation de séquences oligonucléotidiques de faible taille, liées de façon covalente et stable à un support, mais encore d'acides nucléiques plus importants, également liés à ce même support. Il peut également être envisagé de fixer sur un même support plusieurs oligonucléotides ayant des séquen- ces nucléotidiques distinctes, notamment après activation des bases de leurs nucléotides d'extrémités respectives et fixation à des extrémités de bras distincts portés par ce même support.- On remarquera d'ailleurs que l'invention peut être mise en oeuvre de façon à autoriser la séparation finale de l'oligonucléotide formé du support par des réactions chimiques ou biochimiques décrites dans la littérature (12). La séparation peut intervenir, soit en un site spé- cifique à proximité du support ou de l'extrémité du bras, soit dans un site prévu dans la chaîne nucléotidique elle- même. Par exemple, il peut être envisagé que les premiers élements de la séquence nucléotidique soient formés de ribonucléotides, les suivants étant alors tous constitués par des désoxyribonucléotides. La séparation entre la chaîne de désoxyribonucléotides et le support pourra alors être réalisée de façon en soi connue, par exemple par un traitement au moyen de réactifs chimiques ou d'une ribonu- cléase. D'autres caractéristiques de l'invention apparaî- tront encore au cours de la description qui suit d'exem- ples préférés de construction de molécules supportées con- formes à l'invention. Bien entendu, cette description ne présente aucun caractère limitatif. o10 Parmi les supports mis en oeuvre dans ces exem- ples, on mentionnera les résines A1, A2 et A3, lesquelles ont été fonctionnalisées comme suit. "FONCTIONNALISATION D'UN SUPPORT POLYACRYLAMIDE" Résine A: On porte à 175 C un mélange de polyacrylmorpholide (gel ENZACRYL K-2, 1 g) et de diamino 1-10 décane (1 g) dans l'éthylène glycol (14 ml) à 175'C pendant une nuit. On ajoute de la glace au milieu réactionnel refroidi, puis on filtre. La résine est lavée successivement par de l'eau (35 ml), de l'acide chlorhydrique 0,1 N (35 ml), du carbo- nate de sodium 0,1 N (35 ml), de l'eau (35 ml), du métha- nol (70 ml), puis séchée sous vide (1 g). La proportion de fonction amine greffée, déterminée par dosage, est de 440 microM/g pour la résine A1. Résine A2: On prépare de même, à partir de 3 g du gel ENZA- CRYL K-2 et de 25 ml d'éthylène diamine, la résine A2. Résine A3: mg du gel ENZACRYL K-2 et 100 mg de spermine, chauffés à 160'C dans 2 ml d'éthylène glycol pendant une nuit, conduisent à 80 mg de résine A3. EXEMPLES: 1') Fixation du triazolo-4 0-diméthoxvtrityl-5' benzoyl- 3'-thymidine (composé 1) sur la résine A1 Ht - (CH2) 10-HN--C- H CH3 DMTO t Oz On laisse à température ambiante un mélange de 200 mg de résine fonctionnarisée A1 et de 150 mg du composé i dans 4 mi de dioxane. Après 5 jours, la résine est esso- rée, rincée avec du dioxane ou du méthanol et dosée. Le dosage du diméthoxytrityl (DMT) (par UV à 507 nm) à l'aide de l'acide benzène sulfonique (ABS) indique une substitution de 31 microM/g. Si on fait réagir la résine avec 85 mg supplémen- taires du composé 1, la substitution après 3 jours passe à 63 microM/g. Un traitement à l'ammoniaque concentrée à C (une des conditions de déprotection des séquences d'oligonucléotides) pendant 5 heures n'altère en rien l'accrochage du nucléotide (dosage du groupe diméthoxytri- tyle). Si l'on chauffe dans l'ammoniaque concentrée à 50 Cpendant une nuit, le dosage du DMT montre une perte de capacité de 10 %. 2 ) Fixation du triazolo-4 0-diméthoxytrityl 5' O-(chloro- 2 phényl bêta-cyanoéthyl)phosphate-3' thymidine (com- posé 2) sur la résine A1 il NH-(CH2)loNH-C- tH3 DMTO rNi CN POCH2CH2CN OCH64C1 On laisse à température ambiante pendant 20 jours, 220 mg de résine A1, 105 mg du composé 2 dans 2 ml de dioxane. La charge de la résine évaluée par détritylation est de 71 microM/g. sur la résine A2 il NH (CH2)2NH-c- Cil3 Ans DMTO N O 0 P OCH2CH2CN OC6H4CI On laisse à température ambiante pendant 14 jours, 250 mg de résine B, 100 mg de composé 2 dans 4 ml de dio- xane. Le dosage par ABS indique une substitution de 32 microM/g. 3 ) Fixation du triazolo-4 débenzoyl-2',5' 0-chloro-2 phé- nyl-bêta cyanoéthyl)phosphate-3' uridine (composé 3) sur la résine A1 HN-(CH2) 1oNH-C- BzO N O=P-OCH2CH2CN 0C6H4CI On laisse à température ambiante 200 mg de résine A1, 100 mg du composé 3 dans 4 mi de dioxane pendant 25 jours. Afin de quantifier la substitution de la résine, on effectue un couplage après acétylation de la résine (anhy- dride acétique à 10 % dans la pyridine). Après décyanoéthylation de la résine dans un mé- lange de triéthylamine/pyridine/eau (1/3/1), coévaporation dans la pyridine, on ajoute 60 mg du composé 1 et 60 mg d'agent de couplage (le triisopropyl benzène-sulfonyl nitrotroazole (TPSNT)) dans 300 microlitres de pyridine. Après une heure, la résine est rincée avec de la pyridine, puis un mélange CH2C12/MeOH: 90/10, puis dosée. La détri- tylation par l'ABS (acide benzène sulfonique) indique une substitution de 29 microM/g en dimère. 4 ) Fixation du triazolo-4 0-diméthoxytrityl-5' benzoyl-3' thymidine (composé 1) sur la résine A: HN CH2CH2NH(CH2)3-N H-CH2CH2tH C- / CH3 DMT O N OBz On laisse à température ambiante pendant 13 jours mg de résine A3, 30 mg du composé 1 dans 1 ml de dio- xane. La charge de la résine substituée est à 94 microM/g. ) Fixation du triazolo-4 0-diméthoxytrityl-5' benzoyl-3' thymidine à la silice "fonctionnalisée": NH-CH2CH2CH2- CH3 DMT. OBz On laisse à température ambiante 500 mg de silice "fonctionnalisée"avec une chaîne aminopropyle (Si-(CH2)3- NH2) et 200 mg du composé 1 dans 4 ml de dioxane. Après 20 jours, on obtient une substitution de 85 microM/g. 6 ) Fixation du triazolo-6 0-diméthoxytrityl-5' benzoyl- 3' N-isobutiryl2 désoxy quanosine (composé 4): NH z2CH2CH2 Q I DMTO 7 JHibu zO On laisse à température ambiante 500 mg de silice PORASIL fonctionnalisee avec une chaîne aminopropyle et mg du composé 4 dans 4 mi de dioxane. Après 20 jours, on obtient une substitution de 16 microM/g. ) Fixation du triazolo-4 0-diméthoxytrityl-5' benzoyl- 3' thymidine sur un support de verre poreux (en billes): h{(C2) 6N--O- 22CH2H2C2-- N 113 t; N DMTO vO OBz On laisse à température ambiante 1 g de billes de verre poreux (de diamètres 500 Angstrbms) fonctionnarisés par les chaînes apparaissant dans la formule sus-indiquée et commercialisées par la société PIERCE sous la désigna- tion CPG:AALC 500 Angstrôms, et 310 mg du composé 1 dans 8 ml de dioxane. Après 16 jours, le support présente une substitution de 22 microM/g. Afin de vérifier-la stabilité de la liaison nuelé- oside-support, les billes de verre ainsi fonctionnarisées sont chauffées à 50 C pendant une nuit: le dosage du diméthoxytrityl en 5' n'a pas changé; d'autre part, le contrôle par chromatographie en phase liquide sous haute pression (CLHP) montre l'absence d'hétérocycle dans le filtrat. Ce support a servi à monter une séquence de "18- mer" avec un rendement moyen de couplage de 85 % avec la méthode au phosphotriester, selon la méthode décrite dans la référence bibliographique (4). Après déblocage de tous les groupements protecteurs, le fragment d'ADN lié au support est hydrolysé par l'acide chlorhydrique 2 N pen- dant 5 heures: on retrouve dans le filtrat les, 4 bases utilisées dans le rapport convenable (dosage CLHP). 8 ) Fixation du triazolo-4 0-diméthoxytrityl-5' benzoyl- 2' 0-(chloro-2 phényl-bêta-cyanoéthyl)phosphate-3' (composé 5) sur un support de verre poreux: -C2) -i90C298 2r-2 O OBz O=I-OCH2CH2CN OC6H4CI On laisse à température ambiante 200 mg de billes de verre CPG/AALL 500 Angstr ms (PIERCE), 50 mg du composé dans 2 ml de dioxane. Après 17 jours, la substitution est de 10 microM/g. BIBLIOGRAPHIE (1) H. Koster et Coll., Tetrahedron, 40, 103, 1984. (2) H. Caruthers et Coll., Tetrahedron Letters, 21, 719, 1980. (3) M.J. Gait et Coll., Nucleic Acids Research, 10, 6243, 1982. * (4) K. Itakura et Coll., Nucleic Acids Research, 8, 5507, 1980. (5) A. Rosenthal et Coll. Tetrahedron Letters, 24, 1691, 1983. (6) C.K. Brush et Coll., Nucleic Acids Research, 10, 6295, 1982. (7) C.B. Reese et Coll., Tetrahedron Letters, 21, 2265, 1980. (8) W.L. Sung, J. Org. Chem., 47, 3623, 1982. (9) C.B. Reese et Coll., Nucleic Acids Research, Symposium Series 7, Koster Editor, p. 5. (10)C.B. Reese et Coll., Tetrahedron Letters, 22, 4755, 1981. (1l)R.A. Jones et Coll., Tetrahedron Letters, 40, 3, 1984. (12)G.R. Gough et Xoll., Tetrahedron Letters, 24, 5317, 1983. REVENDICATIONS i - Molécule supportée comportant dans sa struc- ture au moins un groupe nucléoside fixé de façon covalente à un support solide, le site de fixation au groupe nucléo- side intervenant au niveau de la base entrant dans la constitution dudit groupe nueléoside. 2 - Molécule supportée selon la revendication 1, caractérisée en ce que le groupe nucléoside appartient à un nucléotide terminal d'un oligonucléotide ou polynucléo- tide. 3 - Molécule supportée selon la revendication 1 ou la revendication 2, caractérisée en ce que le site de fi- xation au support du groupe nucléosidique ou du nucléotide terminal de l'oligonucléotide ou polynucléotide se situe au niveau du sommet C-4 du cycle pyrimidine ou du sommet C-6 du cycle purine, selon le cas, dudit groupe nucléoside ou dudit nucléotide terminal. 4 - Molécule supportée selon l'une quelconque des revendications I à 3, caractérisée en ce qu'elle peut être représentée par le schéma: 2. X Qà Q 3 2 dans lequel: - la lettre N, entourée d'un cercle, représente une base, telle que uracile, méthyl-5-uracile, guanine, xanthine, méthyl-5-cytidine, cytidine, amino-6-adénine, inosine; - la lettre S, entourée d'un cercle, repréente un groupe ribose ou désoxy-2-ribose avec R1 représentant un groupe OH, phosphate ou encore oligo ou polynucléotide, R2 re- présentant H ou OH et R3 représentant OH, phosphate ou encore oligo ou polynueléotide, les nombres (2'), (3') et (5') apparaissant sur le schéma correspondant aux sommets numérotés de façon classique des sucres en question; - la lettre X représente un groupe divalent NH ou O; - la lettre B représente un bras et - la lettre A représente le support solide. - Molécule supportée selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisée en ce que la fixation covalente desdits groupes nucléosides ou nucléotides au support du genre en question se fait par l'intermédiaire d'un bras dont la longueur correspond de préférence à celle d'une chaîne carbonée ayant de 4 à 20 atomes de car- bone, dont certains peuvent, le cas échéant, être rempla- cés par des hétéroatomes, tels que O, N ou S. 6 - Molécule supportée selon la revendication 5, caractérisée en ce que le bras est obtenu à partir d'une chaîne bifonctionnelle telle que celle dérivée de l'éthy- lène diamine, le diamino 1-6 hexane, le diamino 1-6 déca- ne, la spermine, des diéthylène-glycols ou dialcoylène- glycols. 7 - Molécule supportée selon la revendication 5 ou la revendication 6, caractérisée en ce que l'oligonucléo- tide ou le polynucléotide peuvent être séparés du support solide, soit en un site spécifique à proximité du support ou de l'extrémité du bras, soit dans un site prévu dans la chaîne oligonucléotidique elle-même. 8 - Procédé de fabrication d'une molécule suppo- tée selon l'une quelconque des revendications 1 à 7, caractérisé en ce que l'on fait réagir le susdit nucléo- side ou le nucléotide terminal d'un oligonucléotide ou polynueléotide, dont le sommet en C-4, lorsque la base est constituée par une pyrimidine, ou en C-6 lorsqu'elle est constituée par une purine, a préalablement été activé, avec un support A, de préférence préalablement "fonction- nalisé" par fixation sur celui-ci d'un bras approprié porteur d'une fonction réactive avec le sommet activé de la susdite base, la réaction impliquant alors la réalisa- tion d'une liaison covalente au niveau du sommet susdit et de l'extrémité du bras. 9 - Procédé selon la revendication 8, caractérisé en ce que l'activation préalable du sommet particulier de la base a été réalisée par fixation sur ce sommet d'un dé- rivé hétérocyclique, notamment du type triazole, nitro- triazole ou tétrazole. - Application de la molécule supportée selon l'une quelconque des revendications 2 à 7, dans laquelle cette molécule supportée comporte un groupe oligonucléo- tide ou polynucléotide, à la constitution de sondes pour la détection de séquences complémentaires ou à la sépa- ration d'un polynucléotide complémentaire contenu dans une solution amenée au contact de cette molécule supportée, la détection ou la séparation étant mise en oeuvre dans des conditions autorisant leur hybridation mutuelle.