FR 2566271 A1 19851227 FR 8409703 A 19840620 Nouveaux conjugués cytotoxiques utilisables en thérapeuti- que et procédé d'obtention. __________________________________________________________ La présente invention a pour objet de nouveaux conjugués cytotoxiques, un procédé pou.r leur préparation et des compositions pharmaceutiques à action cytotoxique. Le brevet US 4 340 535 décrit la préparation de produits anticancéreux, dits conjugués ou encore immunotoxines/ obtenus par couplage par liaison covalente de la chaîne A de la ricine à une structure protéique, telle qu'un anticorps, une immunoglobuline ou un fragment d'immunoglobuline, capable de reconnaître sélectivement u.n antigène donné à la surface des cellules porteuses de cet antigène que l'on veut atteindre, telles que les cellules cancéreuses. La propriété principale de ces conjugués est d'être des agents cytotoxiques spécifiques des cellules cibles visées. L'utilisation d'anticorps dirigés, soit contre des haptènes, soit contre des antigènes de différentiation, soit contre des antigènes associés au-x cellules cancéreuses avait déjà permis d'obtenir des conjugués présentant une spécificité remarquable vis-à-vis des cellules cibles et un pouvoir cytotoxique très élevé vis- à-vis de ces mêmes cellules, comme cela apparaît dans le brevet ci-dessus. Les conjugués possédant ces propriétés étaient toujours des molécules mixtes artificielles dans lesquelles la chaîne A de la ricine était associée par une liaison covalente de type disulfure à un anticorps, une immunoglobuline ou un fragment d'immunoglobuline capable de reconnaître sélectivement un antigène porté par les cellules cibles visées. Les conjugués décrits dans le brevet ci-dessus sont caractérisés par la présence en même temps des trois propriétés suivantes: - la liaison covalente entre la chaîne A de la ricine et - l'anticorps contient un radical disulfure, - l'un des atomes de soufre constituant la liaison disu.lfure est toujours l'atome de soufre appartenant au résidu de cystéine en position 257 de la chaîne A de ricine, - le bras de liaison réunissant la chaîne A de ricine et l'anticorps est fixé sur ce dernier au niveau. de groupements NH2 latéraux ou terminaux d'une chaîne peptidique. Il a été maintenant trouvé qu'il n'est pas nécessaire que les trois conditions indiquées ci-dessus soient simultanément satisfaites pour que l'on puisse obtenir des conjugués possédant à un niveau satisfaisant la propriété -15 de cytotoxicité sélective qui caractérise cette classe de produits anticancéreux. La présente invention a pour objet des produits, appartenant à la classe des Immunotoxines, obtenus. par couplage covalent entre, d'une part la chaîne A de ricine telle quelle ou convenablement modifiée (ci-après désignée par le symbole A) et, d'autre part un anticorps ou fragment d'anticorps, utilisé sous sa forme naturelle ou correctement modifié (ciaprès désigné par le symbole P), possédant la capacité de reconnaître sélectivement u.n antigène porté par les cellules cibles visées. Le couplage entre les 2 protéines peut être réalisé soit par l'intermédiaire d'une liaison disulfure soit par l'intermédiaire d'une liaison thioéther. Ainsi, la présente invention a pour objet, selon un de ses aspects, une immunotoxine formée par couplage d'un anticorps P avec la sous-unité A de la ricine, ayant la formule statistique suivante P'-W-A' I dans laquelle P' représente le radical d'une protéine qui est un anticorps ou un fragment d'anticorps tel quel ou- chimiquement convenablement modifié, privé d'au moins l'une de ses fonctions propres et dans lequel les autres groupes fonctionnels sont éventuellement bloqués, A' représente le radical d'une protéine qui est la sous- unité A de la ricine telle quelle ou chimiquement convenablement modifiée et dans lequelles autres groupes fonctionnels sont éventuellement bloqués et W représente une structure covalente bivalente contenant un groupe thioéther ou un groupe disulfure dont les atomes de soufre sont soit ceux des cystéines de P et A soit sont liés aux fonctions propres de P et/ou de A par des structures d'espacement portant un groupe fonctionnel lié auxdites fonctions propres de P et/ou de A; avec la limitation que, dans le cas o W contient un groupe disulfure, lorsqu'un des atomes de soufre dudit disulfure est celui de l'une des cystéines de A, l'autre soufre est lié à la protéine P par une structure d'espacement portant un groupe fonctionnel lié à une fonction de la protéine P autre qu'une fonction amine. Par liaison thioéther entre deux protéines on entend une liaison du type: O -S- Nyz N-E-Y-Z- o dans laquelle Z, Y et E sont tels que définis ci-dessous. D'une façon préférentielle, la présente invention concerne une immunotoxine de formule statistique P'-W'-A' II dans laquelle P' et A' sont tels que définis ci-dessus et W' représente une structure covalente choisie parmi: (a) un groupement de formule o -(Z '-Y'-E') n- S- EYZ u35 zg'rou EmendeNfom -E-Y-Z- (b) un groupement de formule -Z-Y-E-N S-E Y'Z')n iI o (c) un groupement de formule -Z"-Y-E-S-S- (E'-Y'-Z)n- (d) un groupement de formule -(NH-Y'-E')n-S-S-E-Y-Z- o - Z et Z' représentent les fonctions propres des protéines A et P, choisies parmi l'atome d'oxygène provenant de l'hydroxyle de l'un des résidus de tyrosine; le groupe carbonyle provenant de l'un des carboxyles terminaux ou des carboxyles libres des acides aspartiques et/ou glutamiques de A et de P; le groupe provenant de la structure dialdéhydique obtenue après oxydation d'une des structures glucidiquesde A etde P par l'acide periodique; et le groupe -NH- provenant de l'une des amines terminales de A et de P ou de l'une des amines en position epsilon de l'un des résidus de lysine; - Z" est tel que défini ci-dessus pour Z et Z' mais ne peut pas être -NH-; - Y et Y' représentent des groupes fonctionnels capables de se lier d'une façon covalente avec l'une quelconque des fonctions Z, Z' et Z" des protéines A et P; - E et E' représentent des structures d'espacement inertes; et - n représente zéro ou 1. Les immunotoxines de la présente invention sont représentées par les formules I et II ci-dessus en forme simplifiée, mais il est entendu que la structure covalente bivalente -W- ou -W'- est liée à au moins une molécule P et au moins à une molécule A. Le nombre de liaisons avec les protéines P et A dépend du nombre des fonctions propres desdites protéines intervenant dans l'opération de couplage. Par exemple, si une immunotoxine est formée par couplage de la sous-unité A de la ricine native avec l'anticorps P (par exemple l'anticorps T101) par l'intermédiaire d'une structure covalente bivalente ayant un groupe disulfure dont un soufre est celui de la cystéine 257 de la chaîne A de la ricine et l'autre est lié aux oxygènes phénoliques des tyrosines de l'anticorps P par un groupe oxopropylique, elle aura la formule statistique P' (O-CO-CH2-CH2-S-S-A')t dans laquelle t représente le nombre des tyrosines de l'anticorps (par exemple de l'anticorps T101) intervenues dans le couplage. L'immu-notoxine ainsi obtenue correspond ainsi à un produit de formule II, o: - P' est tel que défini ci-dessus, notamment le radical de l'anticorps T101 privé de t fonctions phénoliques de ses tyrosinés; - A' est tel que défini ci-dessus, notamment le radical de la chaîne A de la ricine privé de la fonction thiol de sa cystéine 257; - W' est le groupement (c): -Z"-Y-E-S-S-(E'-Y'-Z')n- o Z" est l'oxygène des hydroxyles phénoliques intervenus dans le couplage, Y est -CO-; E est la structure d'espacement inerte -CH2-CH2- et n est zéro. Particulièrement préférées sont les immunotoxines formées par une ou plusieurs structures contenant la sous- unité A de la ricine et un seul anticorps P, représentées par la formule statistique P' (W'-A')m III dans laquelle P', W' et A' sont tels que définis ci-dessus et m représente le nombre de fonctions propres de la protéine P intervenues dans le couplage. Le nombre m varie de 0,3 à 12, de préférence de 0,5 à 10. L'expression "m varie de 0,3 à 12, de préférence de 0,5 à 10" signifie que la valeur de m est statistique car dans la population des molécules d'anticorps le couplage ne se produit pas d'une façon homogène. Le nombre m peut donc ne pas être entier. La valeur de m dépend notamment des anticorps utilisés, plus particulièrement de leur poids moléculaire. Ainsi, si comme anticorps P de départ on utilise un fragment Fab ou Fab', la valeur de m pourra varier entre 0,3 et environ 2; si l'on utilise un fragment F(ab')2, m pourra varier entre 0,5 et environ 4; pour un anticorps du- type IgG, la valeu-r de m sera entre 0,5 et 6; enfin, pou-r un anticorps IgM, la valeur de m pourra varier entre 1 et 12. Il est cependant préférable que le dégré de substitution sur l'anticorps P soit tel qu'il. conduise à une valeur de m non inférieureà 0,5 et non supérieure à 10. Plus généralement, les structures I et II ci-dessus représentent des formules statistiques écrites de façon simplifiée, comme il a été spécifié ci-dessus. D'une façon analogue, les formules IV, V et IX ci- dessous sont également statistiques - lorsque, le cas échéant, n est i car les réactifs de couplage sont préparés à partir de populations de protéines P1 et P2 qui ont toutes exactement les mêmes propriétés que celles pri- ses en compte ci-dessus pour l'anticorps P, que ces protéi nes P1 et P2 soient elles-mêmes l'anticorps P ou la chaîne A de la ricine. Selon un autre de ses aspects, la présente invention concerne un procédé pour la préparation d'une immunotoxine ayant la structure I ci-dessus, caractérisé en ce qu'on fait réagir en solution aqueuse et à la température ambiante une protéine Pi, qui est indifféremment soit la sousunité A de la ricine éventuellement modifiée soit un anticorps ou fragment d'anticorps, porteuse d'au moins un groupe thiol libre attaché à ladite protéine P1 directement ou par l'intermédiaire d'une structure d'espacement, avec une protéine P2, différente de P1, qui est indifféremment soit la sous-unité A de la ricine soit un anticorps ou fragment d'anticorps, porteuse d'un groupement capable de couplage avec le thiol libre de la protéine P1, de façon à former une liaison thioéther ou disulfu-re; avec la limitation que, dans le cas de la formation de la liaison disulfure, lorsque la protéine P1 est la sous- unité A de la ricine, la liaison avec la protéine P2 est effectuée sur une fonction de ladite protéine P2 autre que les fonctions amine Selon un aspect préférentiel, la présente invention concerne un procédé pour la préparation d'une immunotoxine ayant la structure II, dans laquelle P', W' et A' sont tels que définis ci-dessus, caractérise en ce qu'on fait réagir en solution aqueuse et à la température ambiante une protéine de formule Pi'-(Z-Y-E)n-SH IV avecune protéine de formule statistique P2'-Z'-Y'-E'-G V o Pl'et P2' représentent les radicaux des protéines P1 et P2 liés aux fonctions propres desdites protéines ou les radicaux des protéines P1 et P2 provenant de l'ouverture des structures glucidiques par action de l'acide periodique, Z, Z', Y, Y', E et E' sont tels que définis ci-dessus et G représente un groupe O O ou un groupe -S-S-X, o X est un groupe activateur, étant entendu que lorsque G est un groupe -S-S-X. et Pi' est la sous-unit9 A de la ricine, n est i ou bien n peut être zéro, mais, dans ce cas, Z' est autre que -NH-. Autant P que A sont donc des protéines qui présentent indifféremment (1) la ou les fonctions thiol qui participent au couplage et (2) un ou plusieurs groupements fonctionnels capables de réagir avec les fonctions thiol ci-dessus pour former une liaison disulfure ou thioéther. Selon la présente invention lesdites fonctions thiol et groupements fonctionnels sont ceux des protéines P ou A natives, ou- bien ils y sont introduits artificiellement. Pour des raisons de clarté on précise ci-après la signification des symboles utilisés pour désigner les protéines ci-dessus ou leurs radicaux et des expressions utilisées pour désigner les différents symboles. Le symbole P représente une protéine choisie parmi tout anticorps ou fragment d'anticorps, ou toute immunoglobuline ou fragment d'immunoglobuline ou toute molécule dérivant des précédentes par modification artificielle de l'un quelconque- de leurs groupements fonctionnels, y compris des structures glucidigues qu'elles portent, sous réserve que la protéine ainsi choisie reste capable de reconnaître sélectivement un antigène donné à la surface des cellules porteuses de cet antigène et notamment des cellules cancéreuses. Le symbole A représente une protéine qui est la sous- unité dite chaîne A de la toxine végétale ricine telle qu'elle peut être directement obtenue à partir de la ricine naturelle ou toute molécule dérivant de cette chaine A par modification artificielle de tout groupement fonctionnel porté par cette protéine, y compris la structure glucidique qu'elle porte naturellement, sous réserve que la protéine ainsi choisie présente encore la propriété d'inhiber la synthèse protéique ribosomale des cellules eucaryotes,telle que l'on peut la mettre en évidence dans un modèle d'étude acellulaire. Le symbole P' représente un radical dérivé de la protéine P ci-dessus telle quelle ou chimiquement convenablement modifiée, privée d'une ou plusieurs fonctions propres et dont d'autres groupes fonctionnels sont éventuellement bloqués. Le symbole A' représente un radical dérive de la protéine A ci-dessus telle quelle ou chimiquement convenablement modifiée, privée d'une ou plusieurs fonctions propres et dont d'autres groupes fonctionnels sont éventuellement bloqués. Le symbole P1 représente une des protéines A et P telles que définies cidessus qui porte des fonctions thiol libres, attachées à ladite protéine directement ou par l'intermédiaire d'une structure d'espacement. Le symbole P2, différent de P1, représente une des protéines A et P telles que définies ci-dessus, qui porte un ou plusieurs groupements fonctionnels capables de réagir avec les thiols libres. Le symbole Pl' représente le radical de la protéine P1 lié aux fonctions propres de la protéine P1 notamment les fonctions SH (de la cystéine), NH2 (terminal de la protéine ou dans la position epsilon des lysines), OH (des tyrosines), COOH (des acides aspartiques et glutamiques) ou le radical de la protéine P1, provenant de l'ouverture des structures glucidiques par action de l'acide périodique. Le symbole P2' représente le radical de la protéine P2 lie aux groupes fonctionnels caractéristiques NH2 (terminal de la protéine ou dans la position epsilon des lysines), OH (des tyrosines), COOH (des acides aspartiques et glutamiques). Par exemple, P1'-SH représente la protéine P1 (qui peut être indifféremment l'anticorps ou fragment d'anticorps P ou-la sous-unité A de la ricine) dans laquelle les groupes SH des cystéines sont libres et les autres groupes fonctionnels sont éventuellement bloqués. De la même façon, P1'-CO- représente la protéine P1, dans laquelle son groupe carboxylique terminal ou les groupes carboxyliques de ses acides glutamiques et aspartiques sont couplés avec un groupement qui apporte un groupe S! introduit artificiellement. Encore, P2'-NH- représente la protéine P2 (qui peut être indifféremment l'anticorps ou- fragment d'anticorps P ou la sous-unité A de la ricine) dans laquelle son groupe amino terminal ou- les groupes amino de ses lysines sont attachés à un groupement susceptible de couplage avec le thiol de la protéine P1. Le terme "structure d'espacement inerte" tel qu.'utilisé ici pour E et E' désigne un radical organique bivalent inerte vis-à-vis des réactifs utilisés dans le procéd,' tel qu'un groupe alkylène à chaine droite ou ramifiée contenant de 1 à 15 atomes de carbone, qui peut contenir une ouplusieurs doubles liaisons ou. qui peut être interrompu- par des atomes d'oxygène ou- qui peut être substitué par un ou- plusieurs groupes fonctionnels inertes, tels que des groupes méthoxy, des groupes carboxyles libres ou estérifiés, des groupes dialkylamino, des groupes carbamates. Le même terme désigne également un groupe arylène contenant de 6 à 15 atomes de carbone qui peut être substitué par un ou- plusieurs groupes fonctionnels inertes comme indiqué ci-dessus pour le groupe alkylène. L'expression "groupe fonctionnel capable de se lier d'une façon covalente" telle qu'utilisée ici pou-r Y et Y' désigne tous les groupes susceptibles de réagir avec les fonctions propres des protéines P1 et P2 pour donner une liaison covalente. Ainsi, les groupes -CO- et -(C=NH)- sont des groupes fonctionnels convenables susceptibles de se lier aux amines libres, aux thiols et aux hydroxyles phénoliques des protéines. De même, le groupe -NH- est un groupe fonctionnel convenable susceptible de se lier aux groupes carboxyliques libres des protéines. Le groupe =N- est un groupe fonctionnel convenable, susceptible de se lier aux deux atomes de carbone des structures glucidiques des protéines Pl et P2 après oxydation avec les ions periodate. L'expression "fonction propre des protéines" telle au'utilisée ici pour Z, Z' et Z", désigne les radicaux provenant des groupes caractéristiques des acides aminés formant les protéines P1 et P2, telles que l'atome d'oxygène provenant des hydroxyles des acides aminés tyrosine et éventuellement serine, le groupe carbonyle provenant du carboxyle terminal ou des carboxyles libres des acides aspartique et glutamique, le groupe -NH- provenant de l'amine terminale des protéines ou des lysines; l'atome de soufre provenant du thiol de la cystéine. La même expression désigne également le groupe provenant de la structure dialdéhydique obtenue après oxydation d'une des structures glucidiques des protéines Pl et P2 par traitement avec les ions periodate. Le terme "radical activateur", tel qu'utilisé ici pour X, désigne un groupement lié à un pont -S-S- capable de réagir avec un thiol libre pour former un disulfure avec libération de X-SH. Des radicaux activateurs convenables sont les groupes pyridyl-2 et pyridyl-4, non substitués ou substitues par un ou des halogènes ou des radicaux alkyle, carboxyle, alkoxycarbonyle; le groupe phényle non substitut ou, de préférence, substitué par un ou des halogènes ou des groupes nitro, alkoxy, carboxyle ou alkoxycarbonyle; ou un groupe alkoxycarbonyle tel que methoxycarbonyle. Les termes "alkyle" et "alkoxy" désignent des groupes contenant jusqu-'à 5 atomes de carbone. Le terme "alkylène" désigne des groupements aliphatiques saturés, à chaîne droite ou ramifiée, contenant jusqu'à 10 atomes de carbone pouvant être substituéspar un ou plusieurs groupes fonctionnels inertes tels que les groupes alkoxycarbonyle. L'obtention de la chaîne A de ricine pure, nécessaire à la réalisation des produits de la présente invention, a été décrite dans le brevet US 4 340 535. La préparation d'anticorps monoclonaux dirigés contre des cellules cancéreuses humaines a été largement mentionnée dans la littérature scientifique et beaucoup de ces anticorps sont maintenant disponibles commercialement. Le couplage chimique entre la chaîne A de ricine et l'anticorps (ou fragment d'anticorps) peut être réalise selon le procédé de la présente invention par des modes opératoires qui: - préservent les activités biologiques respectives des deux composants du conjugué: l'anticorps et la chaîne A de ricine, - assurent au procédé une reproductibilité satisfaisante et un bon rendement de couplage, - permettent de maîtriser la valeur du rapport chaîne A de ricine/anticorps dans le conjuguéobtenu, - conduisent à un produit stable et soluble dans l'eau. Parmi les modes opératoires répondant à ces caractéristiques, il faut privilégier ceux qui mettent en oeuvre une ou plusieurs fonctions thiol pour l'établissement de la liaison entre les 2 protéines. En effet, ces fonctions thiol se prêtent particulièrement bien à l'établissement, soit de liaisons disulfure, soit de liaisons thioéther qui satisfont les unes comme les autres au-x conditions générales ci-dessus. D'une façon générale, pou-r la bonne conduite des réactions de couplage entre protéines et en vue d'éliminer notamment les réticulations anarchiques, il importe que l'une des protéines à coupler et elle seule porte la ou les fonctions thiol à mettre en oeuvre, alors que l'autre protéine et elle seule porte une ou plusieurs fonctions susceptibles de réagir avec les thiols en milieu aqueux de pH compris entre 5 et 9 et à une température ne dépassant pas 30 C, pour fournir une liaison covalente stable et définie. Les caractéristiques des protéines P1 et P2 utilisées comme produits de départ sont illustrées en détail ci- après. La structure d'espacement E peut être remplacée par les structurespréférentielles R à R8 qui ne sont données qu'à titre d'exemple. I - CAS DE LA PROTEINE P1 Cette protéine étant dans tous les cas celle qui porte la ou- les fonctions thiol qui participeront au couplage, la situation se présente de façon diverse selon la nature de cette protéine P1. A) La protéine Pi porte naturellement un ou plusieu-rs radicaux thiol utilisables pour permettre le couplage à la protéine P2: c'est notamment le cas si la protéine P1 est le fragment d'anticorps connu sous la dénomination de F(ab)', tel qu'il est classiquement obtenu- par protéolyse limitée de l'anticorps en présence de pepsine, suivie d'une réduction du(ou-des) ponts disulfu-re entre chaînes lourdes. C'est également le cas si la protéine P1 est la chaîne A de la ricine, ou un dérivé de cette chaîne A o l'un au- moins des groupements thiol portés par les résidus de cystéine 171 et 257 de la chaîne A de ricine native est libre et accessible au couplage chimique. Dans tous ces cas, la protéine P1 porteuse de son (ou ses) groupements) thiol naturelW peut être utilisée dans cet état pou-r l'étape de couplage. B) La protéine P1 ne porte pas naturellement de radicaux thiol utilisables pour permettre le couplage à la protéine P2: - c'est notamment le cas si la protéine P1 est une immunoglobuline native, un anticorps entier ou un fragment d'anticorps et notamment l'un des fragments couramment dénommés F(ab)'2 ou F(ab), - un autre cas o la protéine P1 ne porte pas naturellement de fonction thiol utilisable pour le couplage est celui o cette protéine P1 est la chaîne A de ricine o chacun des deux résidus de cystéine est soit blo- qué paralkylation, soit inaccessible à la modification chimique. Dans tous les cas, il conviendra alors d'introduire artificiellement sur de telles molécules une ou plusieurs fonctions thiol aptes à permettre le couplage. Trois types de réaction peuvent être utilisés de préférence pour l'introduction de fonctions thiol: 1 - Le premier type de réaction est l'action de l'anhydride S-acétylmercapto succinique qui est capable d'acyler des fonctions aminées de la protéine. On pourra ensuite libérer les fonctions thiol par élimination du radical acetyl protecteur, par action de l'hydroxylamine, ainsi que cela a été décrit (Archives of Biochemistry and Biophysics, 119, 41-49, 1967). On pourra même, dans le cas o la (ou les) fonction) thiol ainsi introduite4 sous forme protégée doivent réagir ultérieurement avec un radical disulfure mixte active, se dispenser de la déprotection préalable par l'hydroxylamine; en effet, la réaction de formation de la liaison disulfure utilisant les réactifs objet de la présente invention se produit aussi bien avec le radical S- acetyl qu'avec le thiol libre. D'autres méthodes décrites dans la littérature scientifique peuvent aussi être utilisées pour l'introduction de fonctions thiol sur la protéine à modifier. 2 - Le deuxième type de réaction consiste à faire réagir la protéine par ses groupements carboxyliques avec une molécule diaminée symétrique présentant un pont disulfure, de formule: H2N-R1-S-S-R1-NH2 dans laquelle R1 est un groupe aliphatique comportant de 2 à 5 atomes de carbone. La réaction se fait de préférence avec la cystamine LR1 = -(CH2)2-2 en présence d'un agent de couplage, tel qu'un carbodiimide et notamment un dérivé soluble dans l'eau comme l'éthyl-l (diméthylamino-3 propyl)-3 carbodiimide, et conduit à la formation, selon les stoechiométries mises en oeuvre, de l'un des dérivés suivants ou- du- melange des deux: Pl'-CONH-Rl-S-S-R1-NH2 (Ia) Pl'-CO-NH-R1-S-S-RI-NH-CO- P1 (Ib). Un tel produit de réaction peut être alors utilise de deux manières: a) Si dans les formules Ia ou Ib, la- protéine Pi est la chaîne A de ricine ou l'un de ses dérivés le milieu réactionnel obtenu est soumis sans fractionnement à l'action d'un réducteurtel que le mercapto-2-éthanol, ce qui conduit à l'obtention d'un dérivé protéique unique de formule générale: Pl'-CONH-R1l-SH Le produit ainsi obtenu est alors purifié par dialyse ou- filtration sur gel. b) Si dans les formules la et Ib, le radical P'li est le radical de la protéine P1 constitué par un anticorps ou l'un de ses fragments, le milieu réactionnel obtenu sera utilisé tel quel pour le couplage en utilisant alors une méthode d'échange thiol/disulfure par exemple celle décrite par Gilliland et Collier (Cancer Research, , 3564, 1980). 3 - Le troisième type de réaction consiste à utiliser des motifs glucidiques naturellement présents soit su-r la chaîne A de ricine, soit sur les anticorps pour fixer le radical porteur du thiol que l'on se propose d'introduire. La protéine est alors soumise à une oxydation par les ions periodate afin de faire apparaître des fonctions aldéhyde sur les motifs glucidiques. Après arrêt de la réaction par addition d'un excès d'éthylène glycol et élimination des sous-produits et excès de réactifs par dialyse, le produit obtenu- est traité par une molécule diaminée symétrique présentant un pont disu-lfu-re, de formule générale: H2N-Rl-S-S-Rl-NH2 dans laquelle Rl est un groupe aliphatique comportant de 2 à 5 atomes de carbone. Les produits d'addition formés sont alors réduits en amines secondaires ou tertiaires par action d'un hydru-re métallique convenable, notamment le borohydru-re de sodium. La réaction se fait de préférence avec la cystamine Rl = -(CH2)2-7 et conduit à la formation, selon les stoechiométries mises en oeuvre de l'un des dérivés suivants ou du mélange des deux: OH I /CHX P1! N-Ri -S-S-R1-NH IIa -CH./ I OH OH OH l l P1 CHN-R1-S-S-R1-N -P1 IIb -CH/ CH/ O OH OH Selon que, dans les formules IIa ou IIb, le radical P'i1 est le radical de la protéine P1 constituée par la chaîne A de la ricine éventuellement modifiée ou un anticorps ou fragment d'anticorps, le milieu réactionnel obtenu pourra alors être traité exactement comme indiqu6 ci-dessus pour les produits caractérisés par les structures la ou Ib. Dans les deux derniers types de réaction d'introduction artificielle de groupements thiols décrits ci-dessus (ceux utilisant un réactif disulfure diaminé symétrique), il est préférable que la protéine P1 mise en oeuvrene possède ni groupes SH libres, ni groupes aminés libres. Dans le cas de la chaîne A et de ses dérivés cela peut toujours être réalise par alkylation du ou des SE naturels obtenue par réaction avec un réactif usuel des thiols tel que le N-éthylmaléiimide ou l'acide iodacétique ou l'un de ses dérivés et par méthylation des NH2 naturels selon le procédé de méthylation réductive décrit par MEANS et FEENEY (Piochemistry 7, 2192 (1968)). On peut introduire ainsi dans la chaine A de ricine native jusqu'à 6 radicaux méthyle' par mole. La protéine ainsi modifiée conserve l'integralité de ses propriétés biologiques et notamment sa capacité à inhiber la synthèse protéique ribosomale dans les cellules eucaryotes. Dans les cas des anticorps ou fragments d'anticorps et plus généralement de toutes les substances du premier groupe tel que défini précédemment qui ne possedent pas de groupements SH naturellement libres, il conviendra de procéder à une méthylation réductive, par exemple selon la méthode de MEANS et FEENEY: on peut ainsi habituellement introduire plusieurs dizaines de radicaux methyle par mole d'anticorps sans modifier sa capacité à reconnaître sélectivement un antigène à la surface des cellules porteuses de cet antigène. II- CAS DE LA PROTEINE P2 Cette protéine est dans tous les cas celle qui porte un ou plusieurs groupements fonctionnels capables de réagir avec les thiols de la protéine P1 pour former une liaison soit disu-lfure soit thioéther. Ces groupements fonctionnels, toujours artificiellement introduits sur la protéine P2, différent selon que l'on cherche à obtenir un couplage par liaison disulfure ou par liaison thioéther et sont choisis comme indiqués ci-après. 1) Cas de la liaison disu-lfure. La préparation du conjugué peut alors être représentée par le schéma: Pi'-(Z-Y-E)n-SH + P2'-Z'-Y'-E'-S-S-X - Pi'-(Z-Y-E)n-S-S-E'-Y'-Z'-P2' + X-SH La protéine P2 substituée par un atome de soufre activé est obtenue à partir de la protéine P2 elle-même ou de la protéine P2 correctement protégée, par substitution à l'aide d'un réactif lui-même porteur d'un atome de sou-fre activé selon le schéma: P2 + L-Y'-R-S-S-X - P2'-Z'-Y'-R'-S-S-X dans lequel: P2 désigne la protéine à substituer * L-Y' représente une fonction permettant la fixation covalente du réactif sur la protéine. Le groupement fonctionnel L-Y' est une fonction capable de se lier de façon covalente avec l'u-ne quelconque des fonctions portées par les chaînes latérales des aminoacides constitutifs de la protéine à substituer. Parmi celles-ci, on retiendra particulièrement: a) Les fonctions aminées terminales des chaines peptidiques ou- les fonctions aminées latérales des radicau-x lysyle contenus dans la protéine. Dans ce cas, L- Y' pourra notamment représenter: un groupe carboxylique qui pourra se lier aux fonctions aminées de la protéine en présence d'un agent de couplage tel qu'un carbodiimide et notamment un dérivé soluble dans l'eau comme l'êthyl-1 (diméthylamino-3 propyl)-3 carbodi- imide; un chloru-re d'acide carboxylique qui est susceptible de réagir directement avec les fonctions aminées pour les acyler, un ester dit "activé" tel qu'un ester d'ortho- ou para-, nitro- ou dinitro-phényle ou encore un ester de N-hydroxy succinimide qui peut réagir directement avec les fonctions aminées pour les acyler; À un anhydride interne d'un diacide carboxylique tel, par exemple, l'anhydrique succinique qui réagit spontanément avec les fonctions amines pour créer des liaisons amides' /NH /' 15. un groupement imidoester - C (L = OR2, Y'= -(C=NH)-) \OR2 o R est un groupe alkyle, réagissant avec les groupes aminés de la protéine P2 selon la réaction: H HN N P2' - NH2 + C- R3 P2'-NH - C - R3 + R20H R20/ o R3 représente le groupe -R-S-SX; b) les fonctions phénol des radicaux tyrosyle contenu-s dans la protéine. Dans ce cas L-Y' pourra notamment représenter un groupement imidazolyl-l- carbonyl, réagissant avec les groupes phénol de la protéine selon la réaction: P2'OH + EN-COR4 > P2'-OCO-R4 + 7jNH o le 1-imidazolyle est L, le groupe CO est Y' et R4 est le groupe -R-S-S-X. Le radical -S-S-X désigne un disulfure mixte activé capable-de réagir avec un radical thiol libre. En parti- culier, dans ce disulfure mixte, X pourra désigner un groupe pyridyl-2 ou pyridyl-4, éventuellement substitué par un ou des radicaux alkyle, halogène ou carboxylique. X peut aussi désigner un groupe phényle de préférence substitué par un ou des groupes nitro- ou carboxylique. X peut encore représenter un groupe alcoxycarbonyle,tel que le groupe méthoxycarbonyle. Le radical R désigne la structure d'espacement (indiquée comme E dans la formule générale II ci-dessus) capable de porter simultanément les substituants Y' et S - S - X. Il devra être choisi de façon à ne pas comporter de fonctions susceptibles d'interférer au cours des réactions ultérieures avec les réactifs utilisés et les produits synthétisés. En particulier, le groupe R peut être un groupe -(CH2)n- avec n compris entre 1 et 10, ou encore un groupe: R5 - CH- CH- R6 dans lequel R6 désigne l'hydrogène ou- un groupe alkyle ayant de 1 à 8 atomes de carbone et R5 désigne un substituant inerte vis-à-vis des réactifs utilisés ultérieurement tel qu'un groupe carbamate - NH - C - OR7 Il O o R7 désigne un groupe alkyle droit ou ramifié ayant de 1 à 5 atomes de carbone et notamment le groupe tertiobutyle. La réaction du composé L-Y'-R-S-S-X avec la protéine P2 est effectuée en phase liquide homogène le plus souvent dans l'eau ou une solution tampon. Lorsque la solubilité des réactifs l'exige, il est possible d'ajouter au milieu réactionnel un solvant organique miscible à l'eau à une concentration finale pouvant atteindre 20 % en volume lorsqu'il s'agit d'un alcool tertiaire tel que le butanol tertiaire ou 10 % en volume lorsqu'il s'agit du diméthylformamide ou du tétrahydrofuranne. La réaction est effectuée à température ambiante pendant un temps variant de quelques minutes à quelques heures. Après quoi, une dialyse ou une filtration sur gel permet d'éliminer les produits de faible masse moléculaire et, en particulier, les excès de réactifs. Ce procédé permet d'introduire un nombre de groupements substitu-ants par mole de protéine habituellement compris entre 1 et 15. En utilisant de tels composés, le couplage avec la protéine P1 est réalisé par mise en présence des deux protéines en solution aqueuse de pH compris entre 6 et 8, à une température ne dépassant pas 300 C, pendant un temps variant de 1 heure à 24 heures. La solution aqueuse obtenue est éventuellement dialysée pour éliminer les produits de faible masse moléculaire, puis le conjugué peut être purifié par diverses méthodes connues. 2) Cas de la liaison thioéther La préparation du conjugue consiste alors à faire réagir P1'-(Z-Y-E)n-SH avec la protéine P2 sur laquelle aura préalablement été introduit un ou plusieurs radicaux malelimide. La réaction est alors représentée par le schéma suivant cité comme exemple: O P1'-(Z-Y-E)-SH + P2'-Z'-CO-R8-N P2'-Z-CO-R8-N dans lequel: R8 représente une structure d'espacement, aliphatique ou aromatique comportant de 1 à 15 atomes de carbone,- inerte vis-à-vis des réactifs utilisés ultérieurement À Z représente des groupes variables selon le type de groupement fonc- tionnel de la Drotéine P2 intervenant dans le couplage. Ainsi Z = oxygène dans le cas d'un ester sur le phénol d'un résidu tyrosyle; Z = NH dans le cas du couplage d'un groupement carboxylique activé sur un groupement aminé de la protéine; Z = NH-CH2 dans le cas de la réaction d'une chlorométhylcétone sur un groupement aminé de la protéine. La protéine P2 substituée par le ou les groupes malélimide est obtenue à partir de la protéine P2 elle-même ou de la protéine P2 correctement protégée, par substitution de fonctions convenables de la protéine à l'aide d'un réactif lui-même porteur du groupement malélimide. Parmi ces fonctions convenables, on retiendra particulièrement: a) Les fonctions aminées terminales des chaînes peptidiques ou les fonctions aminées latérales des résidus lysyle contenus dans la protéine. Dans ce cas, le réactif porteur du radical malélimide pourra être: - soit un réactif de formule générale L-CO-R8- dans laquelle L-CO- représente: soit un groupe carboxylique, la réaction étant alors effectuée apres activation de la fonction carboxylique en présence d'un agent de couplage,tel qu'un carbodiimide et notamment un dérivé soluble dans l'eau tel que l'éthyl-1 (dimêthylamino-3 propyl)-3 carbodiimide, soit un ester dit "activé" tel qu'un ester d'ortho- ou- para- nitro ou dinitrophényle, ou encore un ester de N- hydroxysuccinimide qui réagit directement avec les fonctions aminées pour les acyler. La préparation de tels réactifs est notamment décrite dans Helvetica Chimica Acta 58, 531-541 (1975). D'autres réac- tifs de la même classe sont commercialement disponibles. - soit un réactif de formule générale: ClCH2-CO-R8-N capable de réagir avec les groupements aminés de la protéine P2 selon le schéma: P2'NH2 + ClCH2-CO-R8-N - > P2'NH-CH2-CO-R8-N 2 2 b) les fonctions phénol des radicaux tyrosyle contenus dans la protéine. Dans ce cas, le réactif porteur du radical malélimide pourra être un réactif de formule générale: D - CO-R8-N O réagissant avec les groupes phénol de la protéine selon la réaction: O O FN -CO-R8-N + P2'OH > P2'-O-CO-R8-N + NH N 0.0 La réaction des réactifs porteurs de malélimide avec la protéine P2 est effectuée en phase liquide homogène le plus souvent dans l'eau ou u-ne solution tampon. Lorsque la solubilité des réactifs l'exige, il est possible d'ajouter au milieu réactionnel un solvant organique miscible à l'eau à une concentration finale pouvant atteindre 20 % en volume lorsqu'il s'agit d'u-n alcool tertiaire tel que le butanol tertiaire ou 10 % en volume lorsqu'il s'agit du diméthylformamide ou du tétrahydrofuranne. La réaction est effectuée à température ambiante pendant un temps variant de quelques minutes à quelques heures. Après quoi, une dialyse ou une filtration sur gel permet d'éliminer les produits de faible masse moléculaire et, en particulier, les excès de réactifs. Ce procédé permet d'introduire un nombre de groupements substituants par mole de protéine habituellement compris entre l et 15. En utilisant de tels composés, le couplage avec la protéine Pl est réalisé par mise en présence des deux protéines en solution aqueuse de pH compris entre 6 et 8, à une température ne dépassant pas 30 C, pendant un temps variant de 1 heure à 24 heures. La solution obtenue est éventuellement dialysée pour éliminer les produits de faible masse moléculaire, puis le conjugué peut être purifié par diverses méthodes connues. * Parmi les composés de la présente invention, sont particulièrement convenables ceux de formule II dans laquelle Wtreprésente un des groupements (a), (b), (c) et (d) ci-dessus, o E et E' représentent u-n groupe -(CH2)p-, p étant un nombre entier de 2 à 7 ou-un groupe -CH- CH2COOH La présente invention a également pour objet, selon un autre de ses aspects, un nouveau composé de formule D-CO-E-G VI dans laquelle E et G sont tels que définis ci-dessus. Particulièrement convenables sont les composés de formule VI o E représente un groupe alkylène tel que défini ci- dessus. Les composés de formule VI dans laquelle E représente un groupe (CH2)p- o p est compris entre 2 et 7 ou un groupe -CH- CH2COOH sont préférés. Particulièrement préférés sont les composés de formule VI dans laquelle E représente un groupe -(CH2)p-, o p est un nombre entier de 2 à 7 ou un groupe -CH- CH2COOH et G est un groupement de structure -S-S-X, o X est un radical activateur choisi parmi les groupes 2-pyridyle et 4-pyridyle non substitués ou substitués par un ou des halogènes ou des radicaux alkyle, carboxyle, alkoxycarbonyle, le groupe phényle non substitué ou substitué par un ou des halogènes ou des groupes nitro, alkoxy, carboxyle ou- alkoxycarbonyle, ou un groupe alkoxycarbonyle. Les nouveaux composés de formule VI sont préparés par un procédé caractérisé en ce qu'on fait réagir un composé de formule G-E-COOH VII dans laquelle G et E sont tels que définis ci-dessus, avec le carbonyldiimidazole de formule [-- \CO-C VIII dans un solvant organique à la température de 10 à 40 C. Les solvants éthérés, tels que le dioxanne et le tétrahydrofuranne sont particulièrement préférés. Les composés de formule VI sont particulièrement utiles comme agents de couplage sur les hydroxyles des tyrosines des protéines A et P. Ainsi, selon un autre de ses aspects, la présente invention a pour objet des nouveaux produits ayant la formule statistique suivante P2"-O-CO-E-G IX dans laquelle - P2" représente le radical d'une protéine choisie parmi (a) tout anticorps ou- fragment d'anticorps ou. toute immunoglobuline ou fragment d'immunoglobuline ou- toute molécule dérivant des précédentes par modification artificielle de l'un quelconque de leurs groupements fonctionnels; et (b) la sous-unité A de la ricine ou toute molécule dérivant de ladite sous-unité A par modification artificielle de l'un quelconque de leurs groupements fonctionnels; ledit radical étant privé d'un ou- plusieurs groupes hydroxyles phénoliques des tyrosines - l'atome d'oxygène est celu-i des groupes hydroxyles phénoliques manquant dans le radical P2"; - E et G sont tels que définis ci-dessus. Particulièrement préférés sont les composés de formule IX dans laquelle E représente un groupe -(CH2)p-, o p est un nombre entier de 2 à 7 ou- u-n groupe -CH- CH2COOH et G est un groupement de structure -S-S-X, o X est un radical activateur choisi parmi les groupes 2-pyridyle et 4-pyridyle non substitués ousubstitués par un ou des halogènes ou. des radicau-x alkyle, carboxyle, alkoxycarbonyle, le groupe phényle non substitué ou substitué par un ou des halogènes ou- des groupes nitro, alkoxy, carboxyle oualkoxycarboxyle, ou un groupe alkoxycarbonyle. Les produits de formule IX sont préparés en faisant réagir un produit de formule P2"-OH dans laquelle P2" est tel que défini ci-dessus et le groupe hydroxyle est l'hydroxyle phénolique manquant dans les tyrosines du- radical P2", avec un compose de formule VI ci-dessus à une température de 10 à 40 C dans un solvant aqueux contenant éventuellement un solvant organi- que miscible à l'eau, tel que par exemple un solvant éthéré comme le dioxanne ou le tétrahydrofuranne. Les exemples qui suivent permettent de mieux comprendre l'invention sans en limiter la portée. Dans tous ces exemples, la préparation des conjugués sera décrite à partir de la chaîne A de ricine sous sa forme native, telle qu'elle est obtenue par le procédé décrit dans le brevet US 4 340 535. Les anticorps utilisés dans ces exemples sont: - soit l'anticorps monoclonal T101 dirigé contre l'antigène T65 présent sur les lymphocytes T humains et de nombreuses lignées de cellules de leucémies T humaines. Cet anticorps est celui décrit dans Journal of Immunology (2), 725-7 (1980) Il est commercialement disponible auprès de HYBRITECH Inc. SAN DIEGO, California, USA - soit l'anticorps monoclonal AT15E, dirigé contre l'antigène Thy 1.2 des lymphocytes murins. Cet anticorps est celui décrit dans Journal of Immunology 122, 2491-8 (1979) et a été obtenu à partir de l'hybridome décrit dans Hybridoma 1 (1) 13-17 (1981) - soit un anticorps monoclonal anti-DNP. I - EXEMPLE 1 Pl = chaîne A de ricine portant un SH introduit par l'intermédiaire des carboxyles. P2 anticorps T101 sur lequel on a introduit un groupement disulfure active par l'intermédiaire des amines. A) Préparation de la chaîne A de ricine correctement fonctionnalisée: i) Blocage du thiol naturel par le Néthylmalglimide ml de solution aqueuse de chaIne A de ricine à 8 mg/ml (soit 4,1 micromoles de chaîne A) sont additionnés d'une solution aqueuse de mercapto-2-éthanol de telle sorte que la concentration finale de ce dernier soit de 1 pour cent. La solution est laissée au repos une heure puis dialysée en continu contre du tampon phosphate 125 mM pH 7 renouvelé pendant 40 heures à raison de 300 ml/heure. Selon la méthode d'ELLMAN (Methods in Enzymology 25, 457, 1972), on a dose 0,9 équivalent SH par mole de chaîne A de ricine. On procède au blocage de cette fonction SH par le N- éthylmal!limide selon la méthode décrite dans Methods in Enzymology 11, 541, (1967). Pour cela, la chaîne A de ricine obtenue à l'étape précédente est incubée pendant 2 heures à 30 C en présence de 20 équivalents de N- éthylmalélimide par mole de chaîne A. On élimine- l'excès de réactif par dialyse en continu contre du tampon phosphate 125 el pH 7 renouvelé pendant 20 heures à raison de 500 ml/heure. On obtient ainsi 13 ml d'une solution de chaîne A de ricine à 7 mg/ml, ne présentant plus de groupements thiol dosables par le réactif d'ELLMAN. Le produit ainsi obtenu- est désigné ultérieurement sous l'appellation chafne A (NEM). 2) Modification des carboxyles A 40 mg, soit 1,33 micromoles de chaîne A (NEM) dans du tampon phosphate 125 mM sont ajoutés 1,95 mmoles de chlorhydrate de cystamine et 390 microlitres d'une solution aqueuse 1 M d'éthyl-l(diméthylamino-3 propyl)-3 carbodiimide. Le pH de la solution est ramené à 5,4 par de l'acide chlorhydrique 1 N. On laisse la réaction évoluer 2 heures à 20 C puis elle est arrêtée par addition de 750 microlitres de solution aqueuse 1 M d'acétate de sodiu-m et le milieu réactionnel est purifié par dialyse en continu contre du tampon phosphate 125 mMN pH 7 (20 1 à 300 ml/h). Le pont disu-lfure de la cystamine fixée à la protéine est ensuite réduit par le mercapto-2-éthanol (à la concen- tration finale de 3 pour cent pendant 1 heure à 30 C). On poursuit ensuite la dialyse contre le tampon phosphate 125 mM pH 7 comme précédemment. Apres centrifugation on obtient 14 ml de solution de chaîne A (NEM) modifiée, à 1,75 mg/ml. Sur ce produit, la méthode d'ELLMAN permet de doser 0,7 groupement-SH libre par mole de protéine. Examinée par électrophorèse en gradient de polyacrylamide, cette chaîne A (NEM) modifiée présente une seule bande de poids moléculaire voisin de 30 000. B) Préparation de l'anticorps modifié A 25 ml d'une solution d'anticorps T101 à 10 mg/ml (soit 1,68 micromoles d'anticorps) est ajoutée une solution aqueuse contenant 11il mg d'acide (pyridyl-2 disulfanyl)-3 propionique préalablement dissous dans le butanol tertiaire et 6,5 mg d'éthyl-1 (diméthylamino-3 propyl)-3 carbodiimide. Le mélange est agité 15 minutes à 30 C puis dialysé en continu contre du tampon phosphate 125 mM pH 7 (40 h à 500 ml/h).Après dialyse la solution protéique est centrifugée et l'on obtient 24,5 ml d'une solution à 10,3 mg d'anticorps modifié par ml. Par dosage spectrophotom6trique à 343 nm de la pyridine thione-2 libérée par échange avec le mercapto-2 éthanol on constate que l'on a obtenu un anticorps portant 1,7 groupements disulfure mixte activé par mole d'anticorps. C) Préparation de l'immunotoxine A 1,75 ml de la solution d'anticorps activé précédemment obtenue (soit 0,12 micromole), on ajoute 7,5 ml de la solution de chaîne A (NEM) modifiée précédemment obtenue (soit 0,44 micromole) et on incube 5 heures à 30 C. La solution est centrifugée puis purifige par filtration sur colonne de Sephadex C100 avec mesure de la densité optique de l'effluent à 280 nm. Le regroupement des fractions contenant à la fois l'anticorps et la chaîne A conduit à 31 ml de solution d'immunotoxine à 0,51 mg/ml (soit 15, 8 mg). Cette solution contient 0,125 mg de chaîne A (NEM) modifiée couplée à l'anticorps par ml. Le taux de couplage moyen dans cette préparation est donc de 1,6 chaîne A (NEM) par mole d'anticorps. On obtient ainsi une immunotoxine de formule II ci-dessus, o - A' est le radical de la sous-unité A de la ricine dont les groupes SH sont bloqués par la N-éthylmaléimide - P' est le radical de l'anticorps T101 - W' est un groupement de formule -Z"-Y-E-S-S- (E'-Y-Z')n- dans laquelle Z" est -CO- Y est -NH- E est -CH2CH2- E' est -CH2CH2- 15. Y' est -CO- Z' est -NH- n est 1. D) Test d'activité des immu-notoxines La propriété biologique fondamentale de la chaîne A de ricine est d'inhiber la synthèse protéique dans les cellu-les eucaryotes par altération de la sous-unité ribosomale 60S. Les tests réalisés sont donc des tests d'inhibition de la synthèse protéique: soit sur un modèle acellulaire (test n 1) soit sur un modèle cellulaire (test n 2) 1) Le modèle acellu.laire (test n 1) Le protocole in vitro utilise des fractions subcellulaires de foie de rat convenablement complémentées et capables d'incorporer la 14Cphénylalanine en présence d'un ARN messager artificiel: l'acide polyuridylique. Le mode opératoire employé pour préparer les fractions subcellulaires et pour mesurer l'incorporation de 14C- ph&nylalanine est une adaptation de la méthode décrite dans Biochemica Biophysica Acta 312, 608-615 (1973), mettant en oeuvre à la fois une fraction microsomale et une fraction de cytosol des hépatocytes de rat. L'échantillon contenant la chaine A est introduit sous la forme d'une solution convenablement diluée dans un tampon Tris HC1 50 mM, pH 7,6 contenant du mercapto-2 éthanol à 0,2 % et de la sérum albumine bovine à 15 microgrammes/mi. A partir des données de comptage, on calcule par rapport à un milieu témoin sans inhibiteur le pourcentage d'inhibition d'incorporation de 14Cphgnylalanine dans les protéines pour chaque milieu réactionnel contenant de la chaine A de ricine. L'ensemble de ces valeurs permet de déterminer la concentration de chaîne A de ricine (ou CI50) qui inhibe 50 % d'incorporation de la 14C- phenylalanine dans les conditions de l'essai. 2) Le modèle cellulaire (test n 2) Ce test mesure l'effet des substances étudiées su-r l'incorporation de 14C-leucine dans des cellules cancéreuses en culture. Les cellules utilisées dépendent de la spécificité de l'anticorps choisi pour la fabrication de l'immunotoxine. Dans cet exemple, il s'agit de cellules de la lignée lymphoblastoiide humaine CEM portant naturellement l'antigène T65. Ces cellules sont incubées en présence de préparations des substances à étudier puis soumises en fin d'incubation à une mesure de leur taux d'incorporation de 14C-leucine. Cette mesure est effectuée selon une technique adaptée de la technique décrite dans Journal of Biological Chemistry 249 (11), 3557-3562 (1974) utilisant le traceur 14C- leucine pour la détermination du taux de synthèse protéique. La détermination de la radioactivité incorporée est effectuée ici sur les cellules entières isolées par filtration. A partir de ces déterminations, on peut tracer les courbes effets/doses présentant en abscisse la concentration des substances étudiées et en ordonnée l'incorporation de 14C- leucine exprimée en pourcentage de l'incorporation par des cellules témoins en l'absence de la substance à étudier. On peut ainsi déterminer pour chaque substance étudiée la concentration qui inhibe de 50 pour cent l'incorporation de 14C-leucine dans les cellules ou "concentration inhibitrice 50" (CI50). On a vérifié que la mesure d'incorporation de la 14C-leucine dans les cellules entières conduit à la détermination de CI50 identiques à celles obtenues par la méthode classique de mesure de la synthèse protéique. 3) Résultats a - Test n 1 (modèle acellulaire) L'activité inhibitrice ' de la chaine A modifiée a été déterminée. On observe une CI 50 égale à 2, 18.10**-10 mole/l. La CI50 de la chaîne A témoin de l'expérience est 1,03. 10'*-10 mole/l: la modification n'entraîne donc pas de perte d'activité significative de la chaîne A. b - Test n 2 (modèle cellulaire) Le test est réalisé sur cellules CEM portant naturellement l'antigène T65. Le conjugué présente une activité cytotoxique significative (CI50 environ égale à 10*-9 mole/l) 50 fois supérieure à celle de la chaîne A de ricine(CI50 = 5 10-8 mole/l dans les mêmes conditions opératoires). En présence de chlorure d'ammonium 10 mM l'activité cytotoxique du conjugué augmente de façon très importante (CI50 = 2.10**-12 mole/l). L'activité cytotoxique est alors 25000 fois plus élevée que celle de la chaîne A. II - EXEMPLE 2 P1 = chaîne A de ricine portant un SH introduit par l'intermédiaire des carboxyles P2 = anticorps T101 sur lequel on a introduit un groupement mal&iimide sur les amines. A) Préparation de la chaîne A correctement fonctionnali- sée: identique à celle de l'exemple 1 B) Préparation de l'anticorps modifié: A 10 ml d'une solution d'anticorps T101 à 10 mg/ml, soit 0,67 micromoles, est ajoutée une solution aqueuse contenant 8,8 mg d'éthyl-l (diméthylamino-3 propyl)-3 carbodiimide et 11 mg d'acide malélimidocaprolique, préalablement incubée 15 minutes à 25 C. Le mélange est agité 3 heures à 30 C puis dialysé en continu à 4 C contre du tampon phosphate 125 mM pH 7 pendant 40 heures (500 ml/h). On obtient ainsi 18,5 ml d'une solution à 5,28 mg d'anticorps modifié par ml. Par dosage du groupement mal6iimide a l'aide de la 14C cystéine, on constate que l'on a obtenu un anticorps portant 2,8 groupements activateurs par mole d'anticorps. C) Préparation de l'immunotoxine. A 3 ml de la solution d'anticorps active précédemment obtenue (soit 0,11 micromoles), on ajoute 7,5 ml de la solution de chaîne A de ricine modifiée, soit 0,44 micromoies). On laisse le mélange évoluer 1 h à 30 C. Les groupements malelimide résiduels sont bloqués par addition de 5,8 micromoles de cystéine. L'incubation dure 1 h à C. Le milieu réactionnel est purifie par filtration sur une colonne de Sephadex G100 comme décrit dans l'exemple 1. On obtient 39 ml de solution d'immunotoxine à 0,35 mg/ml (soit 13,7 mg). Cette solution contient 0,10 mg de chaîne A (NEM) modifiée couplée à l'anticorps par ml. Le taux de couplage moyen dans cette préparation est donc de 2,1 chaîne A (NEM) par mole d'anticorps. On obtient ainsi une immunotoxine de formule II ci-dessus, o - A' est le radical de la sous-unité A de la ricine dont les groupes SH sont bloqués par le N-éthylmaléimide - P' est le radical de l'anticorps T101 - W' est un groupement de formule (Z'-Y '-E') n-_z - Q/ -E-Y-Z- dans laquelle 5. Z' est-CO- Y' est -NH- E' est -CH2CH2- E est -(CH2)6- Y est -CO- 10. Z est -NH- n est 1. D) Tests d'activité: a - Test n 1 (modèle acellulaire):identique à l'exemple 1 b - Test n 2 (modèle cellulaire): Dans des conditions identiques à celles de l'exemple 1, la CI50 en présence d'activateur (chlorure d'ammonium 10 mM) est de 2.10**-11 mole/1 ce qui représente une activité cytotoxique du conjugué 2500 fois supérieure à celle de la chaîne A (CI50 = 5.10**-8 mole/1 dans la même expérience). III- EXEMPLE 3. P1 = chaîne A de ricine sur laquelle on a introduit un groupement SH par l'intermédiaire du motif glucidique. P2 = anticorps T101 sur lequel on a introduit un groupement disulfu-re activé su-r les amines. A) Préparation de la chaîne A de ricine correctement fonctionnali sée: 1) Héxaméthylation de la chaîne A: La réaction de méthylation s'effectue à 0 C sous agitation dans du tampon borate 0,2 M pH 10 selon la méthode de Means et Feeney (Biochemistry 7, 2192 (1968)).A ml de chaîne A (3 mg/ml) on ajoute successivement 20 mg de borohydrure tritié (à 9,5 mCi/mmole) puis 350 microlitres de formaldéhyde à 6 % en 5 additions de 70 microlitres chacune échelonnées sur un délai de 30 min.) On élimine l'excès de réactif par dialyse en continu- contre du tampon phosphate 125 mM pH 7 (40 1 à 300 ml/ h). Après dialyse la solution protéique est centrifugée. On recueille 36,5 ml de chaîne A hexamethylée à 2,6 mg/ml. 2) Blocage au N-éthyl malélimide: On procède au blocage du SH naturel de la chaîne A comme indiqué à l'exemple 1. 3) Oxydation periodique: 6 ml de la solution de chaîne A (NEM) hexamethylée précédemment obtenue, sont traités par NaIO4 (12,8 mg) en minutes à l'obscurité, à pH 4,5 et à 0O C. La réaction est arrêtée par addition de 600 microlitres d'éthylène glycol et le milieu réactionnel est dialysé en continu contre du tampon carbonate 0,1 M, pH 10 (20 h à 500 ml/h). 4) Couplage à la cystamine: Apres dialyse, 5 ml de la solution protéique sont mis à incuber avec 11,25 mg de chlorhydrate de cystamine pendant 1 heure à 250 C. Cette incubation est suivie d'une réduction par le borohydrure de sodium (200 équivalent par mole de chaîne A), soit 50 microlitres d'une solution 2 M), pendant 1 h à 25 C. On élimine l'excès de réactif par dialyse en continu contre du tampon phosphate 125 mM pH 7. Le pont disulfure de la cystamine fixée est ensuite réduit par le mercapto- 2 éthanol à la concentration finale de 5 pour cent pendant 1 h à 300 C. On poursuit ensuite la dialyse en continu contre du tampon phosphate 125 mM pH 7 (20 1 à 300 ml/h). Apres dialyse et centrifugation on a dosé selon la méthode d'Ellman 0,68 équivalent SH par mole de chaîne A. B) Préparation de l'anticorps modifié: identique à celle décrite dans l'exemple 1. C) Préparation de l'immunotoxine: A 1,3 ml de la solution d'anticorps active à 10,32 mg/ml précédemment obtenue (0,09 micromoles), on ajoute 4 ml de la solution de chaîne A activée (soit 0,23 micromoles). On laisse le mélange évoluer 5 h à 30 C. Le milieu réactionnel est purifié sur une colonne de Sephadex G100 selon la méthode précédemment décrite. On obtient 6,7 ml d'une solution d'immunotoxine à 0,25 mg/ml (soit 1,7 mg) . Cette solution contient 0,024 mg de chaine A (NEM) modifiée couplée à l'anticorps. Le taux de couplage moyen dans cette préparation est donc de 0,5 chaîne A (NEM) par mole d'anticorps. On obtient ainsi une immunotoxine de formule II ci-dessus, o - A' est le radical de la sous-unité A de la ricine dont les groupes thiol sont bloqués par la N-éthylmaléimide, les groupes aminés sont méthylés, et les fonctions glucidiques ont été modifiées par traitement par les ions periodate - P' est le radical de l'anticorps T101 - W' est un groupement de formule -Z"-Y-E-S-S-(E'-Y'-Z')- n dans laquelle Z" est le groupe OH ! CH- /'...CH- OH dérivant du dialdéhyde obtenu par traitement des structures glucidiques avec l'acide periodique Y est =N- E est -CH2CH2- 30. E' est -CH2CH2 Y' est -CO- Z' est -NH- n est 1. D) Tests d'activité: a) test no 1 (modèle acellulaire) L'activité inhibitrice de la chaîne A modifiée a été déterminée. On observe une CI50 de 2,7.10**-10 mole/1 alors que la CI50 dans la même expérience de la chaine A non modifiée est de 1,03.10**-10 mole/1. La modification n'entraîne donc pas de perte d'activité significative de la chaîne A., b) Test n 2 (modèle cellulaire): Dans des conditions expérimentales identiques à celle de l'exemple 1, la CI50 en présence d'activateur (chlorure d'ammonium 10 mM) est de 10**-12 mole/l, ce qui représente une activité cytotoxique 10**5 fois supérieure à celle de la chaîne A, (CI50 = 10**-7 mole/1 dans la même expérience.) IV - EXEMPLE 4. P1 = chaîne A de ricine sur laquelle on a introduit un SH par l'intermédiaire du motif glucidique. P2 = anticorps T101 sur lequel on a introduit un groupement malMlimide sur les amines. A) Préparation de la chaîne A correctement fonctionnalisée: identique à celle de l'exemple 3 B) Préparation de l'anticorps modifié: identique à celle de l'exemple 2 C) Préparation de l'immu-notoxine: A 1,65 ml de la solution d'anticorps activé précédemment obtenue (soit 0,058 micromole), on ajoute 2 ml de la solution de chaîne A (NEM) hexaméthylée (soit 0,28 micromoles). On laisse le mélange évoluer 1 heure à 30 C. Les groupements maliélimide résiduels sont bloqués par addition de 3,15 micromoles de cystéine. L'incubation dure 1 heure à 30 C. Le milieu réactionnel est purifié sur une colonne de Sephadex G100 selon la méthode décrite à l'exemple 1. On obtient 34 ml d'une solution d'immunotoxine à 0,25 mg/ml, soit 8,75 mg. Cette solution contient 0,040 mg de chaîne A (NEM) modifiée couplée à l'anticorps par ml. Le taux de couplage moyen dans cette préparation est de 1 chaîne A (NEM) hexamethylée par mole d'anticorps. On obtient ainsi une immunotoxine de formule II ci-dessus, o - A' est le radical de la sous-unité A de la ricine dont les groupes thiol sont bloqués par la N-éthylmalGimide, les oroupes aminés sont méthylés, et les fonctions glucidiques ont été modifiées par traitement par les ions periodate - P' est le radical de l'anticorps T101 - W' est un groupement de formule k -(Z'-Y'-E'n)-S n-E-Y-Z- dans laquelle Z" est le groupe OH \...CH- ? / '...CH- OH derivant du dialdéhyde obtenu par traitement des structures glucidiques avec-l'acide periodique Y' est =N- E' est -CH2CH2- 25. E est -CH2CH2- Y est -CO- Z est -NH- n est l. D) Tests d'activité: a) Test n i (modèle acellulaire): identique à l'exemple 3. b) Test n 2: (modèle cellulaire). Dans les conditions expérimentales identiques à celles de l'exemple 1, la CI50 du conjugue en présence de chlorure d'ammonium 10 mM est de 10**-8 mole/litre. V - EXEMPLE 5 P1 = chaine A de ricine sur laquelle on a introduit un groupement SH par l'intermédiaire des amines. P2 = anticorps T101 sur lequel on a introduit un groupement disu-lfure activé par l'intermédiaire des amines. A) Préparation de la chaîne A de ricine correctement fonctionnalisée. 1) Blocage au N-éthylmalélimide: identique à celui décrit à l'exemple 1. 2) Modification des amines: A 2,5 ml de chaîne A (NEM) (0,75 micromoles) dans du tampon phosphate 125 mM pH 7 sont ajoutés 50 microlitres d'une solution d'anhydride S-acêtylmercaptosuccinique à 74 mg par ml de DMF. L'incubation dure deux heures puis le milieu est purifié de l'excès de réactif par dialyse contre du tampon phosphate 125 mM pH 7. On obtient ainsi 2,6 ml d'une solution à 7,75 mg/ml. Par dosage spectrophotométrique des SH libérés par action de l'hydroxylamine, on constate que l'on a obtenu une chaîne A (NEM) modifiée portant 1,4 SH par mole. B) Préparation de l'anticorps modifié: identique à celle décrite dans l'exemple 1. C) Préparation de l'immunotoxine: A 2,3 ml de solution d'anticorps activé précédemment obtenue (soit 0,160 micromoles), on ajoute 1,2 ml de la solution de chaîne A modifiée (soit 0,81 micromoles) en présence de 350 microlitres de solution 1 M de chlorhydrate d'hydroxylamine. L'incubation dure 5 heures à 300 C. Le milieu réactionnel est purifié sur une colonne de Sephadex G100 comme décrit à l'exemple 1 et on obtient 24 ml d'une solution d'immunotoxine à 0,71 mg/ml, soit 17 mg. Cette solution contient 0,130 mg de chaîne A (NEM) modifiée couplée à l'anticorps. Le taux de couplage moyen dans cette préparation est de 1,1 chaîne A (NEM) modifiée par mole d'anticorps. On obtient ainsi une immunotoxine de formule II ci-dessus, o - A' est le radical de la sous-unité A de la ricine dont les groupes SH sont bloqués par le N-éthylmaléimide - P' est-le radical de l'anticorps T101 - W' est un groupement de formule 0 - (NH-Y'-E')n-S-S-E-Y-Z- dans laquelle Y' est -CO- E' est -CH- CH2COOH 5. E est -CH2-CH2- Y est -CO- Z est -NH- n est 1. D) Tests d'activité: a) Test n0 1 (modèle acellulaire): L'activité inhibitrice de la chaîne A modifiée a été déterminée: la CI50 est égale à 1,95.10**-10 mole/l. La CI50 de la chaîne A témoin de l'expérience est 1, 5.10**-10 mole/l. La modification n'entraîne pas de perte d'activité significative de la chaine A. a) Test n 2 (modele cellulaire): Dans les conditions expérimentales identiques à celle de l'exemple 1, la CI50, en présence de l'activateur (chlorure d'ammonium 10 mM), est de 1,6.10**-11 mole/1 ce qu*i représente une activité cytotoxique 4000 fois supérieure à celle de la chaîne A (CI50 = 2,2.10**-7 mole/l). En présence de monensine (50 nM) la CI50 de cette immunotoxine est de 10**-13 mole/1. VI - EXEMPLE 6: P1 = chaîne A de ricine sur laquelle on introduit un groupement SH par l'intermédiaire des amines. P2 = anticorps T101 sur lequel on introduit un groupement malélimide par l'intermédiaire des amines. A) Préparation de la chaîne A de ricine correctement fonctionnalisée: identique à celle décrite dans l'exemple 5. B) Préparation de l'anticorps modifié: identique à celle décrite dans l'exemple 2. C) Préparation de l'immu-notoxine: A 3,5 ml de solution d'anticorps activé précédemment obtenue (soit 0,12 micromole), on ajoute 1,2 ml de la solution de chaîne A (NEM) modifiée (soit 0,31 micromoles) en présence de 350 microlitres de chlorhydrate d'hydroxylamine 1 M. L'incubation dure 1 heure à 30 C. Les maléimides résiduels sont bloqués par 6,9 micromoles de cystéine. L'incubation dure 1 heure à 30 C. Le milieu réactionnel est purifié sur colonne de Sephadex G100 comme décrit à l'exemple 1. On obtient 30 ml d'une solution d'immunotoxine à 0,51 mg/ml (soit 15,2 mg). Cette solution contient 0,08 mg de chaîne A (NEM) modifiée couplée à l'anticorps. Le taux de couplage moyen dans cette préparation est de 1,0 chaîne A (NEM) modifiée par mole d'anticorps. On obtient ainsi une immunotoxine de formule II ci-dessus, ou - A' est le radical de la sous-unité A de la ricine dont les groupes SH sont bloqués par le N-éthylmaléimide - P' est le radical de l'anticorps T101 - W' est un groupement de formule O - (Z'-Y'-E')n-S- l -E-Y-Z- dans laquelle O 35. Z' est -NH- Y' est -CO- E' est -CH- I CH2COOH E est -(CH2)6- 5. Y est-CO- Z est -NH- À n est 1. D) Tests d'activité: a) Test n 1 (modèle acellulaire): identique à l'exemple 5. b) Test n 2 (modèle cellulaire): Dans des conditions identiques à celle de l'exemple 1, la CI50, en présence d'activateu-r (Monensine 50 nM), est de 3,3.10**-12 mole/l ce qui représente une activité cytotoxique 5000 fois supérieure à celle de la chaîne A dans la même expérience. VII - EXEMPLE 7: P1 = anticorps ànti-DNP sur lequel on a introduit un groupement SH par l'intermédiaires des amines. * P2 = chaîne A de ricine sur laquelle on a introduit un groupement malglimide par l'intermédiaire des amines. a) Préparation du réactif de couplage Le réactif de couplage est préparé par condensation de l'acide malélimidocaprolique et de la phényl-2 amino-l ethyl chlorométhyl cétone. 1f- cH5-CO0H ÀH2- -oc2c tN/ CH COOH + H N-CH-CO-CH Cl I - _ CH -C H 0 26 5 J (CH2) 5-CO-NH-CH-CO-CH Cl CH -C H L'acide malétimidocaprolique (1 equivalent) est dissous dans le tétrahydrofurane (THF) en présence de chloroformiate de méthyle (1,1 eéquivalent) et de N-éthyl morpholine (1,1 equivalent). Le mélange est refroidi à - 30 C pendant 5 min. On ajoute progressivement la phényl-2 amino-1 éthyl chlorométhylcétone et la N- éthylmorpholine (1,1 equivalent) dans le THF froid. On laisse la réaction évoluer 1 heure à 4 C puis 3 heures à température ambiante. Le milieu réactionnel est ensuite filtré et évaporé à sec sous vide. Le résidu est redissous dans l'acétate d'éthyle. La phase organique est extraite 2 fois à l'eau, séchée sur MgSO4 et évaporée à sec Le produit obtenu non cristallisé est identifié par son spectre de RMN. B) Préparation de la chaîne A de ricine correctement fonctionnalisée. 1) Blocage au N-éthylmal19imide: identique à celui décrit à l'exemple 1. 2) Modification des amines de la chaîne A: A 8 mg de solution de chaîne A (NEM) dans du tampon phosphate 125 mM pH 7 (soit 0,26 micromoles) sont ajoutés 40 micromoles du réactif de couplage dissous dans le THF. On laisse la réaction évoluer 5 heures à 25 C. La solution est purifiée de l'excès de réactif par dialyse contre du tampon phosphate 125 mM pH 7 et centrifugée. Par dosage des groupements maléimide à l'aide de 14Ccystéine, on constate que l'on a obtenu une chaîne A (NEM) portant 0,5 groupement activateur par mole. C) Préparation de l'anticorps modifié: A 4 ml d'une solution d'anticorps anti-DNP à 10 mg/ml (soit 0,27 micromoles) sont ajoutés 20 microlitres d'une solution d'anhydride-S acétyl mercapto succinique (ou SAMSA) à 140 mg par ml de DMF. Le milieu réactionnel est agité pendant 2 heures à 40 C puis la solution est purifiée de l'excès des réactifs par dialyse contre du tampon phosphate 125 mM pH 7 (20 heures à 400 ml/h). On obtient 4,1 ml d'une solution à 8,6 mg/ml. Apres action de l'hydroxylamine on a dosé par la méthode ELLMAN 3,5 groupements -SH par mole d'anticorps. D) Préparation de l'immunotoxine: A 53 microlitres de la solution d'anticorps précédemment obtenue (soit 0,003 micromoles), on ajoute 0,5 ml de la solution de chaîne A de ricine activée (soit 0,007micromoles). On rajoute dans le milieu réactionnel 10 microlitres d'une solution 0,5 M de chlorhydrate d'hydroxylamine. On laisse la réaction évoluer 10 heures à 25 C. L'existence de l'immunotoxine est mise en évidence par électrophorèse sur gel de polyacrylamide en gradient de réticu-lation. On obtient ainsi une immunotoxine de formule II ci-dessu-s, o - A' est le radical de la sous-unité A de la ricine dont les groupes thiol sont bloqués par le N-éthylmaléimide - P' est le radical de l'anticorps anti-DNP. - W' est un groupement de formule -Z-Y-E-N S-(E'-Y'-Z') - - - -ZY-E-N V. O o dans laquelle 25. Z est -NH- Y est -CO- E est -(CH2)6- E' est -CH- CH2COOH 30. Y' est -CO- Z' est -NH- n est 1. E) Tests d'activité. a) Test n 1 (modèle acellulaire): L'activité inhibitrice de la chaîne A (NEM) modifiée a été déterminée. La CI50 est égale à D,25.10**-10 mole/litre, la CI50 de la chaîne A témoin de l'expérience étant de 0,78. 10**-10 mole/litre. La modification n'entraîne donc pas de perte d'activité de la chatne A. b) Test n" 2 (modèle cellulaire): Le test est réalisé dans les conditions opératoires identiques à celle de l'exemple 1 mais en utilisant des cellules CEM marquées au TNP selon la technique décrite par la demanderesse dans le brevet français n 78/27838, concernant le marquage de cellules HeLa au TNP. La CI50 de l'immunotoxine en présence d'activateur (NH4Cl mM) est de 10**8 mole/litre. Elle est 10 fois inférieure à celle trouvée pour la chaîne A. VIII- EXEMPLE 8 P1 = anticorps T101 sur lequel on a introduit un SH par l'intermédiaire des amines. P2 = Chaîne A de ricine sur laquelle on a introduit un groupement disulfure activé par l'intermédiaire de l'hydroxyle des tyrosines. A) Préparation du réactif de couplage: Il s'agit de l'imidazolide dérivé de l'acide (pyridyl-2 disu-lfanyl)-3 propionique (APDP). Cet imidazolide s'obtient en une seule étape à partir de l'APDP et du carbonyl diimidazole (CDI). )NS- SCH2 CH -COOH + V N-CO-N -> 2 N- - ---N 002O + HN, N S-S-CH2-CH2-CO-N 2 C 2 2-- N 2- 430 mg d'acide (pyridyl-2 disulfanyl)-3 propionique sont dissous dans 2 ml de THF. A cette solution sont ajoutés 405 mg de CDI. Le mélange est agité 1/4 h à 25 C. On observe un dégagement gazeux de C02. Le milieu réactionnel est utilisé directement et immédiatement sans purification. B) Préparation de la chaîne A de ricine correctement fonctionnalisée 1) Blocage au N-éthylmalélimide: identique à celui décrit dans l'exemple 1. 2) Modification des tyrosines: A 18 mg de chaîne A (NEM) dans 10 ml de tampon phosphate mM pH 7 (soit 0,6 micromoles) sont ajoutés goutte à goutte 300 microlitres de la solution de réactif de couplage dans le THF obtenue précédemment. Le milieu réactionnel est agité 15'min. à 25 C puis la solution est - purifiée de l'excès de réactif par dialyse contre du tampon phosphate 125 mM pH 7. On obtient ainsi 9,5 ml d'une solution de chaîne A (NEM) modifiée à 1,55 mg/ml de protéine. Par dosage spectrophotométrique à 343 nm de la pyridine thione-2 libérée par échange avec le mercapto-2 éthanol, on constate que l'on a obtenu une chaîne A (NEM) modifiée portant 1,6 groupements activateurs par mole de chaîne A(NEM). C) Préparation de l'anticorps modifié: A 45 mg d'une solution d'anticorps T101 à 9 mg/ml, soit 0,3 micromoles, sont ajoutés 25 microlitres d'une solution d'anhydride S-acétyl mercapto succinique (SAMSA) à 170 mg/ml dans le dimethylformamide. Le milieu réactionnel est agité pendant 2 heures à 4 C puis purifié par dialyse des réactifs contre du tampon phosphate 125 mM pH 7 pendant 24 heures à un débit de 400 ml/heure. On obtient ainsi 4,1 ml d'une solution d'anticorps modifié à 8,6 mg/ml. A cette solution d'anticorps sont ajoutés 0,46 ml d'une solution de chlorhydrate d'hydroxylamine 0,5 M. Après une incubation de 1 h à 30 C, le milieu réactionnel est purifié par dialyse des réactifs contre le tampon phosphate 125 mM pH 7. Par dosage spectrophotom6trique des groupements -SH ainsi libérés par la méthode d'ELLMAN, on constate que l'on a obtenu un anticorps portant 5 groupements activateu-rs par mole d'anticorps. D) Préparation de l'immunotoxine: A 2,1 ml de la solution d'anticorps précédemment obtenue (soit 0,11 micromole), on ajoute 5,2 ml de la solution de chaîne A modifiée (0,27 micromoles). On laisse le mélange incuber 5 heures à 30 C. Le milieu réactionnel est purifié sur colonne de Sephadex G100 comme indiqué dans l'exemple I. On obtient 17 ml d'une solution d'immuno'toxine à 1,1 mg/ml (soit 18,7 mg). Cette solution contient 0,32 mg/ml en chaîne A (NEM) modifiée. Le taux de couplage moyen de cette préparation est de 2 chaines A (NEM) par mole d'anticorps. On obtient ainsi une immunotoxine de formule II ci-dessus, o - A' est le radical de la sous-unité A de la ricine dont les groupes SH sont bloqués par le N-éthylmaléimide - P' est le radical de l'anticorps T101 - W' est un groupement de formule -(NH-Y'-E')n-S-S-E-Y-Z- dans laquelle Y' est -CO- ò E' est -CH2CH2- E est -CH- CH2COOH 30. Y est-CO- Z est -O- n est 1. E) Tests d'activité: a)Test n 1 (modèle acellulaire) L'activité inhibitrice de la chaîne A (NEM) modifiée a été déterminée. La CI50 est égale à 3,6.10**-10 mole/litre. La CI50 de la chaîne A témoin de l'expérience est de 1,2.10**-10 mole/1. Il n'y a donc pas de perte d'activité significative de la chaîne A modifiée. b)Test n 2 (modèle cellulaire): Dans des conditions expérimentales identiques a celles de l'exemple 2, la CI50 en présence d'activateur (monensine nM) est de 1,2. 10**-12 mole/l, ce qui représente une activité 5.10**4 fois supérieure à celle de la chaîne A (CI50 = 6.10**-8 mole/l). IX - EXEMPLE 9: P1 = anticorps T101 sur lequel on a introduit un groupement SH par l'intermédiaire des amines. P2 = chaîne A de ricine sur laquelle on a introduit un groupement malélimide par l'intermédiaire de l'hydroxyle des tyrosines. A) Préparation de l'agent de couplage: Il s'agit de l'imidazolide dérivé de l'acide maléimidocapro!ique. Cet imidazolide s'obtient en 1 seule étape à partir de l'acide malélimido caprolique et du carbonyldiimidazole (CDI): (CH 2)5 COOH + Fn\N-CCO-N. N N - (CH2)5 -CO-N7 + CO + HN " 2 5' N 2I N 422 mg d'acide malélimidocaprolique sont dissous dans 2 ml de THF. A cette solution sont ajoutés 405 mg de CDI. Le mélange est agité 1/4 h à température ambiante. On observe un dégagement gazeux de C02. Le milieuréactionnel est utilisé directement sans purification. B) Préparation de la chaTne A de ricine correctement fonctionnalisée: 1) Blocage au N-ethyl-maléiimide: identique à celui décrit dans l'exemple 1. 2) Modification des tyrosines: A 18 mg de chaîne A (NEM) dans 10 ml de tampon phosphate mM pH 7 (soit 0,6 micromoles) sont ajoutés goutte à goutte 300 microlitres de la solution de réactif de couplage dans le THF obtenue précédemment. Le milieu réactionnel est agité 15 minutes à 25 C puis la solution est purifiée de l'excès de réactif par dialyse contre du tampon phosphate 125 mM pH 7. On obtient ainsi 20 ml d'une solution de chaîne A (NEM) modifiée à 1,45 mg/ml. Par dosage des groupements malélimide à l'aide de 14C- cystéine, on constate que l'on a obtenu une chaîne A portant en moyenne 1 groupement activateur par mole de chaîne A (NEM) C) Préparation de l'anticorps modifié: identique à celle décrite dans l'exemple 8- D) Préparation de l'immunotoxine: A 2,1 ml de la solution d'anticorps précédemment obtenue (soit 0,11 micromoles), on ajoute 5,8 ml de la solution de chaîne A modifiée (0,28 micromoles). On laisse le mélange incuber 1 h à 30 C. Les groupements malélimide résiduels sont bloqués par 5 micromoles de cystéine. L'incubation dure 1 heure à 30 C. Le milieu réactionnel est purifié sur Sephadex G100 selon la méthode précédemment décrite. On obtient 19,5 ml d'une solution d'immunotoxine à 1,05 mg/ml (soit 20,5 mg). Cette solution contient 0,31 mg/ml de chaîne A (NEM) modifiée. Le taux de couplage moyen de cette préparation est de 2 chaînes A (NEM) par mole d'anticorps. On obtient ainsi une immunotoxine de formule II ci-dessus, o -- A' est le radical de la sous-unité A de la ricine dont les groupes SH sont bloqués par le N-éthylmaléimide - P' est le radical de l'anticorps T101 - W' est un groupement de formule O -(Z'-Y'-E')n-S \N-E-Y-Z- dans laquelle Z' est -NH- 10. Y' est -CO- E' est -CH- CH2COOH E est -CH2-CH2- Y est -CO- 15. Z est -O- n est 1 E) Tests d'activité: a) Test n 1 (modèle acellu-laire): L'activité inhibitrice de la chaîne A modifiée a été déterminée. La CI50 est égale à 10.10**-10 mole/l. La CI50 de la chaîne A témoin de l'expérience est de 1,1L.10**-10 mole/l. Malgré une perte d'activité notable, la chaîne A modifiée conserve encore un important pouvoir d'inhibition de la synthèse protéique. b) Test n 2 (modèle cellulaire) Dans des conditions expérimentales identique à celle de l'exemple 1, la CI50 en présence d'activateur (Monensine nM) est de 3.10**-11 mole/l, ce qui représente une activité 3. 10**3 fois supérieure à celle de la chaîne A (CI50 = 6.10**-8 mole/l). X - EXEMPLE 10- P1 = chaîne A de ricine à l'état natif. P2 = Anticorps AT15E sur lequel on a introduit un groupement malélimide par l'intermédiaire des amines. A) Préparation de l'anticorps modifié: L'anticorps AT15E est modifié selon la méthode décrite dans l'exemple 2. Par dosage à la 14C-cyst6ine, on constate que l'on a introduit 2,4 groupements malélimide par mole d'anticorps. B) Préparation de l'immunotoxine: A 25 ml de la solution d'anticorps activé précédemment obtenue (soit 0,65 micromoles), on ajoute 8,3 ml d'une solution de chaîne A de ricine dans le tampon phosphate mM pH 7 (soit 2 micromoles). L'incubation dure 1 heure à 30 C. Les groupements malélimide residuels sont bloqués par addition de 9,25 micromoles de cystéine en 1 h à 30 C. Le milieu réactionnel est purifié sur colonne de Sephadex G100 comme décrit à l'exemple 1. On obtient ainsi ml d'une solution 'à 1 mg/ml (soit 90 mg). Cette solution contient 0,27 mg/ml de chaîne A. Le taux de couplage moyen dans cette préparation est de 1,8 chaîne A par mole d'anticorps. On obtient ainsi une immunotoxine de formule III ci- dessus, o - A' est le radical de la sous-unité A de la ricine - P' est le radical de l'anticorps AT15E - W' est un groupement de formule S-(E'-Y'-Z') - -Z-Y-E-N n dans laquelle Z est -NH- Y est -CO- E est -(CH2)5- 30. n est zéro - m est 1,8 C) Tests d'activité: Test n 2 (modèle cellulaire): Le test est réalisé dans les conditions opératoires identiques à celles de l'exemple 1 mais en utilisant des cellules leucémiques murines T portant l'antigène Thy 1.2. La CI50 en présence d'activateur (NH4Cl 10 mM) est de **-9 mole/l, ce qui représente une activité cytotoxique 500 fois plus élevée que celle de la chaîne A (CI50 5.10**-7 mole/l) dans l'expérience. XI - EXEMPLE 11: P1 = chaîne A de ricine à l'état natif. P2 = anticorps T101 sur lequel on a introduit un groupement disulfure activé par l'intermédiaire de l'hydroxyle des tyrosines. A) Préparation du réactif de couplage: identique à celle décrite à l'exemple 8 B) Préparation de l'anticorps modifié A 12,8 mg d'anticorps T101 dans 2,8 ml de tampon phosphate 125 mil pH 7, sont ajoutés goutte à goutte 34 microlitres de la solution de THF diluée au 1/2 décrite précédemment (200 équivalents/mole d'IgG). Le milieu réactionnel est agité 1/4 h à température ambiante puis purifié par dialyse On obtient ainsi 2,6 ml d'une solution d'anticorps modifié à 4,55 mg/ml. Par dosage spectrophotométrique à 343 nm de la pyridine thione-2 libérée par échange avec le mercapto-2 éthanol, on constate que l'on a obtenu un anticorps portant 2,2 groupements activateurs par mole d'anticorps. C) Préparation de l'immunotoxine A 750 microlitres d'une solution de chaîne A de ricine à 7,1 mg/ml (soit 0,177 micromoles) sont ajoutés 2,5 ml d'une solution d'anticorps activé à 4,55 mg/ml (soit 0,075 micromoles d'anticorps). On laisse le mélange incuber 18 h à 25 C. Le milieuréactionnel est purifié sur colonne de Sephadex G100 comme décrit à l'exemple 1. On obtient 13 ml d'une solution d'immunotoxine à 0,8 mg/ml (soit 10,4 mg). Cette solution contient 0,2 mg/ml de chaîne A. Le taux de couplage moyen de cette préparation est de 1,5 chaîne A par mole d'anticorps. On obtient ainsi une immunotoxine de formule III ci- dessus, o - A' est le radical de la sous-unité A de la ricine - P' est le radical de l'anticorps T101 - W' ést un groupement de formule -Z"-Y-E-S-S-(E'-Y'-Z')n- dans laquelle * Z" est -O- Y est -CO- 10. E est -CH2-CH2- n est zéro - m est 1,5 D) Tests d'activité: Test n0 2 (modèle cellulaire) : Dans des conditions expérimentales identiques à celles de l'exemple 1,la CI50 en présence d'activateur (Monensine nM) est de 3,5.10**-13 mole/l ce qui représente une activité cytotoxique 1,5.10**5 fois supérieure à celle de la chaîne A dans la même expérience (CI50 = 0,6.10**-8 mole/1). XII- EXEMPLE 12 P1 = chaîne A de ricine à l'état natif. P2 = anticorps T1l01 sur lequel on a introduit un groupement malélimide par l'intermédiaire de l'hydroxyle des tyrosines. A) Préparation du réactif de couplage: identique à celle de l'exemple 9 B) Préparation de l'anticorps modifié: A 12,8 mg d'anticorps T101 dans 2, 8 ml de tampon phosphate mM pH 7 sont ajoutés goutte à goutte 34 microlitres de la solution de THF diluée au 1/2 décrite précédemment (200 équ-ivalents/mole d'IgG). Le milieu réactionnel est agité 1/4 heure à température ambiante puis purifié par dialyse. On obtient ainsi 2,6 ml d'une solution d'anticorps modifié a 4,5 mg/ml. Par dosage des groupements malélimide a l'aide de 14C cystéine, on constate que l'on a obtenu un anticorps portant 4,0 groupements activateurs par mole d'anticorps. C) Préparation de l'immunotoxine A 850 microlitres d'une solution de chaîne A de ricine à 7,1 mg/ml (soit 0,20 micromole) on ajoute 2,5 ml d'une solution d'anticorps activé à 4,5 mg/ml (soit 0,075 micromole d'IgG). On laisse le mélange incuber 1 h à 25 C. Les groupements malélimide résiduels sont bloqués par 6 micromoles de cystéine. L'incubation dure 1 h à 300 C. Le milieu réactionnel est purifié sur colonne de Sephadex G100o comme décrit à l'exemple 1 et on obtient 11 ml d'une solution d'immunotoxine à 0,76 mg/ml (soit 8,36 mg). Cette solution contient 0,29 mg/ml de chaîne A. Le taux de couplage moyen de cette préparation est de 3 chaînes A par mole d'anticorps. On obtient ainsi une immunotoxine de formule III ci- dessus, o - A' est le radical de la sous-unité A de la ricine - P' est le radical de l'anticorps T101 - W' est un groupement de formule O S-(E'-Y'-Z') - 25. -Z-Y-E-N. n dans laquelle Z est -O- Y est -CO- 30. E est -(CH2)5- n est zéro - m est 3 D) Tests d'activité: À Test n0 2 (modèle cellulaire) Dans les conditions expérimentales identiques à celle de l'exemple 1, la CI50 de l'immunotoxine en présence d'activateur (Monensine 50 nM) est de 1,7.10**-12 mole/l, ce qui représente une activité 3.10**3 fois supérieure à celle de la chaîne A dans la même expérience. REVENDICATIONS 1. Une immunotoxine formée par couplage d'un anticorps avec la sous-unité A de la ricine, ayant la formule statistique suivante: P'-W-A' dans laquelle P' représente le radical d'une protéine P qui est un anticorps ou un fragment d'anticorps tel quel ou chimiquement convenablement modifié, privé d'ureou plusieurs fonctions propres et dans lequel d'autres groupes fonctionnels sont éventuellement bloqués, A représente le radical d'une protéine qui est la sous-unité A de la ricine telle quelle ou chimiquement convenablement modifiée, privée d'une ou plusieurs fonctions propres et dans lequel d'autres groupes fonctionnels sont éventuellement bloqués et W représente une structure covalente bivalente contenant un groupe thioéther ou un groupe disulfure dont les atomes de soufre soit sont ceux des cystéines de P et A soit sont liés aux fonctions propres de P et/ou de A par des struc- tures d'espacement portant un groupe fonctionnel lié auxdites fonctions propres de P et ou de A; avec la limita- tion que, dans le cas o W contient un groupe disulfure, lorsqu'un des atomes de soufre dudit disulfure est celui de l'une des cystéines de A, l'autre soufre est lié à la pro- téine P par une structure d'espacement portant un groupe fonctionnel lié à une fonction de la protéine P autre que la fonction amine. 2. Une immunotoxine formée par couplage d'un anticorps P avec la sousunité A de la ricine, ayant la formule statistique suivante P'-W'-A' dans laquelle P' représente le radical d'une protéine P qui est un anticorps ou un fragment d'anticorps tel quel ou chimi- auement convenablement modifié, privé d'une ou plusieurs fonctions propres et dans lequel d'autres groupes fonctionnels sont éventuellement bloqués, A' représente le radical d'une protéine qui est la sous-unité A de la ricine telle quelle ou chimiquement convenablement modifiée, privée d'une ou plusieurs fonctions propres et dans lequel d'autres groupes fonctionnels sont éventuellement bloqués et W' représente une structure bivalente choisie parmi (a) un groupement de formule o I -zZ'-Y'-E') -S \ n /N-E-Y-Z- o (b) un groupement de formule o -Z-Y-E-N (E Y'-Z') n- (c) un groupement de formule -Z"-Y-E-S-S- (E'-Y'-Z')n- (d) un groupement de formule - (NH-Y'-E')n-S-S-E-Y-Z- o - Z et Z' représentent les fonctions propres des protéines A et P, choisies parmi l'atome d'oxygène provenant de l'hydroxyle de l'un des résidus de tyrosine; le groupe carbonyle provenant de l'un des carboxyles terminaux ou de l'un des carboxyles libres des acides aspartiques et/ou glutamiques de A et de P; le groupe provenant de la structure dialdéhydique obtenue après oxydation d'une des structures glucidiques de A et de P par l'acide periodique; et le groupe -NH- provenant de l'une des amines terminales de A et de P ou de l'une des amines en position epsilon de l'un des résidus de lysine; - Z" est tel que défini ci-dessus pour Z et Z' mais ne peut pas être -NH-; - Y et Y' représentent des groupes-fonctionnels capables de se lier d'une façon covalente avec l'une quelconque des fonctions Z, Z' et Z" des protéines A et P; - E et E' représentent des structures d'espacement inertes; - n représente zéro ou 1. 3. Une immunotoxine forme par couplage d'un anticorps P avec la sousunité A de la ricine, ayant la formule statistique suivante P' (W'-A')m dans laquelle m varie de 0,3 à 12, P' représente le radi- cal d'une protéine P qui est un anticorps ou un fragment d'anticorps tel quel ou chimiquement convenablement modi- fié, privé d'une ou plusieurs fonctions propres et dans lequel les autres groupes fonctionnels sont éventuellement bloqués, A' représente le radical d'une protéine qui est la sous-unité A de la ricine telle quelle ou chimiquement convenablement modifiée, privée d'une ou plusieurs fonctions propres et dans lequel les autres groupes fonctionnels sont éventuellement bloqués et W' représente une'structure bivalente choisie parmi (a) un groupement de formule O -(Z'-Ys'-E') -S - n S N-E-Y-Z- O (b) un groupement de formule O -Z-Y-E-EN\t-YO-ZI) _ (c) un groupement de formule -Z"-Y-E-S-S- (E'-Y'-Z')n- (d) un groupement de formule -(NH-Y'-E')n-S-S-E-Y-Z- o - Z et Z' représentent les fonctions propres des protéines A et P, choisies parmi l'atome d'oxygène provenant de l'hydroxyle de l'un des résidus de tyrosine; le groupe carbonyle provenant de l'un des carboxyles terminaux ou de l'un des carboxyles libres des acides aspartiques et/ou. glutamiques de A et de P; le groupe provenant de la structure dialdéhydique obtenue après oxydation d'une des structures glucidiques de A et de P par l'acide periodique; et le groupe -NH- provenant de l'une des amines terminales de A et de P ou de l'une des amines en position epsilon de l'un des résidus de lysine; - Z" est tel que défini ci-dessus pour Z et Z' mais ne peut pas être -NH-; - Y et Y' représentent des groupes fonctionnels capables de se lier d'une façon covalente avec l'une quelconque des fonctions Z, Z' et Z" des protEines A et P; - E et E' représentent des structures d'espacement inertes; - n représente zéro ou 1. 4. Une immunotoxine selon la revendication 3 de formule statistique P' (W'-A')m dans laquelle W' et A' sont tels que définis dans la revendication 3, P' est un fragment d'anticorps Fab ou Fab' et m varie de 0,3 à 2. 5. Une immunotoxine selon la revendication 3 de formule statistique P' (W'-A')m dans laquelle W' et A' sont tels que définis dans la revendication 3, P' est un fragment d'anticorps F(ab')2 et m varie de 0,5 à 4. 6. Une immunotoxine selon la revendication 3 de formule statistique P' (W'-A')m dans laquelle W' et A' sont tels que définis dans la revendication 3, P' est un anticorps du type IgG et m varie de 0,5 à 6. 7. Une immunotoxine selon la revendication 3 de formule statistique P'(W'A')m dans laquelle W' et A' sont tels que définis dans la revendication 3, P' est un anticorps du type IgM et m varie de 1 à 12. 8. Procédé pour la préparation d'une immunotoxine ayant la formule statistique suivante P'-W-A' dans laquelle P' représente le radical d'une protéine P qui est un anticorps ou un fragment d'anticorps tel quel ou chimiquement convenablement modifié, privé d'une ou plusieurs fonctions propres et dans lequel le, autres groupes fonctionnels sont éventuellement bloqués, A' représente le radical d'une protéine A qui est la sous-unité A de la ricine telle quelle ou chimiquement convenablement modifiée, privée d'une ou plu- sieurs fonctions propres et dans lequel les autres groupes fonctionnels sont éventuellement bloqués et w repré- sente une structure covalente bivalente contenant un groupe thioéther ou un groupe disulfure dont les atomes de soufre sont soit ceux des cystéines de P et A soit sont liés aux fonctions propres de P et/ou de A par des structures d'espacement portant un groupe fonctionnel lié auxdites fonctions propres de P et/ ou de A; avec la limitation que, dans le cas o W contient un groupe disulfure, lorsqu'un des atomes de soufre dudit disulfure est celui de l'une des cystéines de A, l'autre soufre est lié à la protéine P par une structure d'espacement portant un groupe fonctionnel lié à une fonction de la protéine P autre que la fonction amine, caractérisé en ce qu'on fait réagir en solution aqueuse et la température ambiante une protéine Pi, qui est indifféremment soit la sous- unité A de la ricine éventuellement modifiée soit un anticorps ou fragment d'anticorps P, porteuse d'au moins un groupe thiol libre attaché à ladite protéine P1 directement ou par l'intermédiaire d'une structure d'espacement, avec une protéine P2, différente de P1, qui est indifféremment soit la sous-unité A de la ricine soit un anticorps ou fragment d'anticorps, porteuse d'un groupement capable de couplage avec le thiol libre de la protéine P1, de façon à former une liaison thioéther ou-disulfure; avec la limitation que, dans le cas de la formation de la liaison disulfure, lorsque la protéine P1 est la sous- unité A de la ricine, la liaison avec la protéine P2 est effectuée sur une fonction de ladite protéine P2 autre que les fonctions amine. 9. Procédé pour la préparation d'une immunotoxine ayant la formule statistique suivante P'-W'-A' dans laquelle P' représente le radical d'une protéine P qui est un anticorps ou un fragment d'anticorps tel quel ou chimiquement convenablement modifié, privé d'une ou plusieurs fonctions propres et dans lequel les autres groupes fonction- nels sont éventuellement bloqués, A' représente le radical d'une protéine A qui est la sous-unité A de la ricine telle quelle -ou chimiquement convenablement modifiée, Drivée d'une ou plusieurs fonctions propres et dans lequel les autres groupes fonctionnels sont - 6Mtuellement bloqués et W' représente une structure bivalente choisi parmi; (a) un groupement de formule O n S N-E-Y-Z- o (b) un groupement-de formule O II -Z-Y-E-N y S-(E'-Y '-Z') - (c) un groupement de formule -Z"-Y-E-S-S- (E'-Y'-Z")n- (d) un groupement de formule - (NH-Y'-E')n-S- S- E-Y-Z- o - Z et Z' représentent les fonctions propres des protéines A et P, choisies parmi l'atome d'oxygène provenant de l'hydroxyle de l'un des résidus de tyrosine; le groupe carbonyle provenant de l'un des carboxyles terminaux ou de l'un des carboxyles libres des acides aspartiques et/ou glutamiques de A et de P; le groupe provenant de la structure dialdéhydique obtenue après oxydation d'une des structures glucidiques de A et de P par l'acide periodique; et le groupe -NH- provenant de l'une des amines terminales de A et de P ou de l'une des amines en position epsilon de l'un des résidus de lysine; - Z" est tel que défini ci-dessus pour Z et Z' mais ne peut pas être -NH-; - Y et Y' représentent des groupes fonctionnels capables de se lier d'une façon covalente avec l'une quelconque des fonctions Z, Z' et Z" des protéines A et P; - E et E'représentent des structures d'espacement inertes; - n représente zéro ou 1, caractérisé en ce qu'on fait réagir en solution aqueuse et à la température ambiante une protéine de formule Pli'- (Z-Y-E)n-SH III avec un protéine de formule P2'-Z'-Y'-E'-C IV o Pl'et P2' représentent les radicaux des protéines P1 et P2 liés aux fonctions propres desdites protéines ou les radicaux des protéines P1 et P2 provenant de l'ouverture des noyaux glucidiques par action de l'acide periodique, Z, Z', Y, Y', E et E' sont tels que définis ci-dessus et G représente un groupe 0 l Il ou un groupe -S-S-X, o X est un groupe activateur, étant entendu que lorsque G est un groupe -S-S-X et Pl' est la sous-unité A de la ricine, n est 1 ou- bien n peut être zéro, mais, dans ce cas, Z' est autre que -NH-. 10. Un produit de formule statistique P2"-O-CO-E-G VIII dans laquelle - P2" représente le radical d'une protéine choisie parmi (a) tout anticorps ou fragment d'anticorps ou toute immunoglobuline oufragment d'immu-noglobuline ou toute molécule dérivant des précédentes par modification artificielle de l'un quelconque de leurs groupements fonctionnels; et (b) la sous-unité A de la ricine ou toute molécule dérivant de ladite sous-unité A par modification artificielle de l'un quelconque de leurs groupements fonctionnels; ledit radical étant privé d'un ou- plusieurs groupes hydroxyles phénoliques des tyrosines - l'atome d'oxygène est celui des groupes hydroxyles phénoliques manquant dans le radical P2"; - E représente une structure d'espacement inerte; et - G représente un groupe O oJ ou ou- un groupe - S-S--X o X est un groupe activateu-r.