FR 2548211 A1 19850104 FR 8310736 A 19830629 La présente invention est relative à un nouveau procédé de production d'un activateur tissulaire du plasminog ne et à l'activateur tissulaire du plasminogène obtenu par ce procédé. Les activateurs du plasminogène sont des enzymes qui catalalysent la transformation du plasminogène en plasmine. La plasmine ainsi formée peut dégrader la fibrine si les inhibiteurs du sang circulant ne la neutralisent pas Comme on le sait, les caillots de fibrine qui se forment dans les 10 thromboses résultent de la transformation du fibrinogène présent dans le sang circulant, en fibrine, sous l'action d'une enzyme spécifique, la thrombine Alors que le sang normal contient un activateur du plasminogène susceptible, en principe, d'induire la dégradation des caillots de fibri15 ne et de les éliminer, il arrive, en fait, que l'activateur du plasminogène soit présent à une concentration insuffisante dans le sang et qu'il faille recourir à une source exogène d'agents favorisant la thrombolyse pour éliminer les caillots intravasculaires. C'est la raison pour laquelle les recherches effectuées sur les enzymes participant à la fibrinolyse sont très poussées car elles présentent un intérêt primordial pour le développement de médicaments thrombolytiques particulièrement bien adaptés au traitement de la pathologie thrombo25 embolique chez l'homme, et notamment de troubles vasculaires thrombotiques occlusifs qui sont actuellement la cause principale de décès en Europe Occidentale et en Amérique du Nord. Actuellement, on utilise en thérapeutique principale30 ment l'urokinase qui est un activateur du plasminogène isolé de l'urine humaine et de cellules de reins humains en culture, et la streptokinase qui est un activateur du plasminogène extrait de streptocoques Toutefois ces activateurs du plasminogène diffèrent de l'activateur tissulaire du plasmi35 nogène par leur absence d'affinité spécifique pour la fibrine: en fait la plasmine libérée par tes activateurs de -2 plasminogène agit sans discrimination sur le fibrinogène et sur la fibrine en sorte que la lyse d'un caillot n'est obtenue qu'au prix d'une réduction importante du fibrinogène circulant, avec tous les risques d'effets secondaires qu'im5 plique une telle réduction (fibrinogènolyse et hémorragies internes). C'est la raison pour laquelle les recherches se sont orientées vers l'obtention d'activateurs du plasminogène présentant une structure du type activateur tissulaire du 10 plasminogène du sang, présentant une affinité spécifique pour la fibrine, donc ne détruisant pas le fibrinogène circulant. Alors que l'urokinase n'est pas absorbée dans les conditions physiologiques sur la fibrine, les activateurs du 15 plasminogène obtenus à partir de tissus d'organes (notamment coeur de porc, ovaires de truie pleine) sont fixés spécifiquement sur la fibrine, ce qui a une incidence physiologique importante sur la fibrinolyse lcf THORSEN et Alia, THROMBOS DIATHES HAEMORRH (STUTTG), 1972, 28, 65-747 A par20 tir des travaux de THORSEN et Alia, on a inventorié les tissus propres à fournir de l'activateur du plasminogène présentant une affinité spécifique pour la fibrine: RIJKEN et Alia lBiochemica et Biophysica Acta, 580 ( 1979) 140153 V ont obtenu à partir de tissu utérin humain, un activateur du 25 plasminogène tissulaire de poids moléculaire 69 000, avec deux fractions réduites, de poids moléculaires respectivement de 31 000 et de 38 000 et d'activité spécifique variant de 16 000 à 60 000 UI/mg de protéine selon le test mis en oeuvre; ALLEN CELL BIOLOGY INTERNATIONAL REPORTS, Vol 4, 30 N 8, Août 1980 a obtenu un activateur de plasminogène tissulaire à partir de tissu vasculaire humain D'autres Auteurs ont obtenu de l'activateur de plasminogène à partir de surnageants de cultures de cellules épithéliales de tissus normaux humains ou animaux (cobaye) J/VETTERLEIN et Alia, 35 THE JOURNAL OF BIOLOGICAL CHEMISTRY, Vol 254, N 3, 10 Février 1979, p 575-578; ATKINSON et Alia, THE LANCET, 25482 1 1 17 Juillet 1982, p 132-133), les premiers rapportant l'existence d'un activateur tissulaire de plasminogène de poids moléculaire 73 000 dont l'activité spécifique n'a cependant pas été indiquée. Par ailleurs, à la suite de la constatation par divers Auteurs du fait que différents types de tissus tumoraux humains contiennent des concentrations d'activateur de plasminogène plus élevées que les tissus normaux, des activateurs de plasminogène ont été recueillis dans le surnageant 10 de cultures de cellules de mélanomes et d'autres néoplasmes humains ou animaux cff notamment WILSON et Alia, CANCER RESEARCH, 40, 933- 938, Mars 1980; DANO et REICH, THE JOURNAL OF EXPERIMENTAL MEDICINE, Vol 147, 1978; DANO et Alia, BIOCHIMICA et BIOPHYSICA ACTA 613 ( 1980) 542- 555 et Demande 15 de Brevet Européen 0041766 LEUVEN RESEARCH AND DEVELOPMENT V.Z w J Il a toutefois été établi rcf MARQUARDT et Alia, THE JOURNAL OF BIOLOGICAL CHEMISTRY, Vol 257, N 9, 10 Mai 1982, p 5220-52257 que les lignées obtenues par culture de cellules de mélanome métastasique humain peuvent libérer 20 dans le surnageant des cultures, un facteur dit "Human transforming growth factor" qui mis en présence de fibroblastes normaux in vitro leur confère le phénotype transformé des cellules tumorales d'origine Une telle constatation conduit à renoncer à utiliser comme sources d'activateur de 25 plasminogène, des cultures de tissus tumoraux. Il a été proposé, d'autre part, de stimuler la production d'activateur de plasminogène d'une culture de cellules épithéliales de rein de porc par addition de doses subtoxiques de concanavaline A à de telles cultures cff MO30 CHAN, BIOCHIMICA et BIOPHYSICA ACTA 588 ( 1979) 273-2787. Enfin, il y a lieu de noter que la Demande de Brevet Européen 0041766 déjà citée plus haut, qui décrit la production d'activateur de plasminogène isolé du surnageant de culture de cellules de mélanome humain, mentionne que la 35 culture, de même que les étapes de purification du surnageant de la culture, peuvent être éventuellement réalisées 25482 11 -4 en présence d'aprotinifie pour éviter la dégradation de la molécule d'activateur pendant ces étapes du procédé. Jusqu'à présent, des rendements satisfaisants en activateur tissulaire du plasminogène n'avaient pu être obte5 nus qu'en mettant en oeuvre des cellules transformées et/ou tumorales, avec tous les inconvénients précités qui en découlent. La présente invention a pour but de pourvoir à un procédé de production d'un activateur tissulaire de plasmi10 nogène, qui répond mieux aux nécessités de la pratique que les procédés visant au même but antérieurement connus, notamment en ce qu'il utilise comme source d'activateur de plasminogène, des cellules de tissus non tumorales, aisément disponibles en quantités importantes, à croissance relative15 ment rapide lorsqu'elles sont mises en culture, produisant un activateur présentant une affinité spécifique élevée pour la fibrine, et en ce qu'il permet une stimulation de la production de l'activateur de plasminogène, avec un haut rendement en activateur par rapport au nombre de cellules initia20 lement mis en oeuvre et bien supérieur à ceux obtenus à ce jour, et ce dans des conditions faciles à mettre en oeuvre au niveau industriel. La présente invention a pour objet un procédé de production d'un activateur tissulaire de plasminogène à partir 25 de cultures de tissus non tumoraux, caractérisé par: la mise en culture et l'incubation d'une catégorie particulière de cellules, à savoir des cellules de tissus embryonnaires, et plus particulièrement des cellules de poumon d'embryon humain, dans des conditions données, c'est-à-dire dans un 30 milieu de culture approprié et en présence d'un stimulant comme la concanavaline A et d'inhibiteurs de protéases comme l'aprotinine et la benzamidine; la séparation du surnageant contenant l'activateur tissulaire du plasminogène, l'isolement de ce dernier par purification et éventuelle35 ment sa concentration. Selon un mode de mise en oeuvre préféré du procédé -5 conforme à l'invention, les cellules embryonnaires de poumon sont mises en culture dans un milieu de culture approprie contenant un adjuvant de culture tel que du sérum de veau foetal ou du sérum de cheval ou un adjuvant équivalent, 5 éventuellement en présence d'une matrice extracellulaire ou de constituants purifiés de nature extra-cellulaire, puis sont incubées dans le meme milieu de culture que ci-dessus, mais dépourvu de sérum de veau foetal et additionné d'insuline, de transferrine et de sélénium, d'un stimulant comme 10 la concanavaline A et d'un inhibiteur de protéases comme l'aprotinine ou la benzamidine. Selon un autre mode de mise en oeuvre préféré du procédé conforme à l'invention, la concanavaline A est pr Osente dans le milieu de culture à une concentration optimale d'en15 viron 5 à 20 A g/ml et l'aprotinine ou inhibiteur analogue est présente dans le milieu de culture à une concentration optimale équivalant à environ 20 à 50 KIU/ml d'aprotinine. Par ailleurs, alors que normalement des cellules traitées par la concanavaline A sont très traumatisées, on a 20 pu déterminer, conformément à l'invention, des conditions qui permettent de restaurer la capacité des cellules traitées à induire à nouveau la production d'activateur de plasminogène. Selon un mode de mise en oeuvre préféré du procédé 25 conforme à l'invention, ces conditions consistent en ce que, pour permettre une réutilisation des cellules traitées par la concanavaline A au cours d'une première opération d'induction de production d'activateur tissulaire de plasminogène, pour au moins une deuxième opération de production d'ac30 tlvateur tissulaire de plasminogène, on réincube la culture de cellules traumatisées par la concanavaline At après séparation du surnageant, dans un milieu de culture approprié contenant du sérum de veau foetal, pendant une durée suffisante pour restaurer les cellules dans leur intégrité, puis 35 on renouvelle le processus d'induction par la concanavaline A en présence d'aprotinine, dans le milieu de culture préci- -6 té dépourvu de sérum de veau foetal et contenant de l'insuline, de la transferrine et du sélénium, et on sépare le nouveau surnageant qui contient l'activateur tissulaire de plasminogène, les restauration et réinduction des cellules 5 pouvant être opérées à plusieurs reprises successives, au moins trois fois. Ce processus présente un grand intérêt pour la production industrielle du produit de l'invention car il évite des opérations longues, fastidieuses et onéreuses. Selon un autre mode de mise en oeuvre préféré du procédé conforme à l'invention, le surnageant de culture est additionné d'un agent tensioactif approprié propre à empêcher l'adsorption de l'activateur présent dans le surnageant, sur les parois des récipients de traitement. Selon encore un autre mode de mise en oeuvre préféré du procédé conforme à l'invention, le surnageant de culture séparé de la culture est purifié par chromatographie d'affinité sur une préparation de fibrine déposée sur une matrice solide adsorbante, en terre de diatomées, du type de la Cé20 lite, qui adsorbe sélectivement l'activateur tissulaire du plasminogène à haute affinité, lequel est élue de la colonne adsorbante à l'aide d'une solution tampon appropriée contenant de l'arginine. Selon une modalité avantageuse de ce mode de mise en 25 oeuvre, l'activateur tissulaire de plasminogène purifié sur fibrine/Célite est concentré par ultrafiltration, puis soumis à une purification complémentaire par gel-filtration. Conformément à l'invention, cette purification complémentaire par gelfiltration est réalisée sur une colonne 30 d'agarose (du type "SEPHADEX") ou d'acrylamide-agarose (du type de l"'ULTROGEL"). Selon une autre modalité avantageuse de ce mode de mise en oeuvre, le produit ainsi obtenu peut être concentré sur membrane calibrée par ultrafiltration et ensuite dialysé 35 contre un tampon approprié. Pour la mise en oeuvre du procédé conforme à l'inven- -7 tion, l'on procède comme suit: Les cellules de poumon d'embryon humain sont ensemencées dans des récipients en plastique à une concentration minimale de 104 cellules/cm 2 de préférence, permettant d'ob5 tenir la confluence en 4 à 5 jours, dans un milieu de culture DMF composé de trois parties de milieu minimum essentiel de Eagle modifié par DULBECCO et d'une partie de milieu de Ham F 12, additionné de 10 % de sérum embryonnaire de veau (SVF) préalablement inactivé par chauffage pendant 30 minu10 tes à 56 'C, d'Hépès 10 m M et de gentamycine 40 Lg/ml. Une fois la confluence cellulaire obtenue, les cellules sont maintenues pendant 3 jours supplémentaires dans le milieu de culture susdit, puis le milieu de culture est éliminé et les cellules sont rincées 2 à 3 fois avec du tampon 15 phosphate salin Elles sont ensuite mises en incubation dans un milieu de culture DMF dépourvu de SVF et contenant de l'insuline 10 Ig/ml, de la transferrine 10 gg/ml, du sélénium 2,5 10-8 M, de la concanavaline A 20 gg/ml et de l'aprotinine 20 à 50 KIU/ml La durée d'incubation à 37 C + 0,5 C 20 est de 16 à 18 heures. Le surnageant de culture est collecté, centrifugé, puis additionné d'un agent tensio-actif tel que Tween 80 ou TRITON X 100 à la dose de 0,01 % (v/v) Ce produit brut est conservé à 25 C sans perdre son activité spécifique qui 25 est de 20-40 unités CTA/ml mesurée par caséinolyse radiale selon la méthode de SAKSELA, Anal, Biochem ( 1981) 111, 276282, ou sur une plaque de fibrine selon la méthode de PLOUGH et Alia, BIOCHIM BIOPHYS ACTA ( 1957) 24, 278-282 ou selon la méthode de BEATTIE et Alia Br J Haematol ( 1976) 32, 30 135-143. La concanavaline A ayant une action traumatisante sur les cellules en culture, celles-ci ne peuvent pas être réutilisées telles quelles pour une nouvelle opération de production d'activateur tissulaire de plasminogène et doivent à 35 nouveau être incubées pendant 7 à 10 jours dans du milieu DMF contenant 10 % de SVF Une fois que les cellules ont de -8 nouveau atteint la confluence, le cycle d'induction par la concanavaline A en présence d'aprotinine est recommencé comme décrit plus haut. Le nombre d'inductions qui peuvent être réalisées sur 5 une même culture peut atteindre 3 inductions avec un rendement semblable. Le surnageant récolté à la suite de l'opération, ou de chaque opération, d'induction est purifié par chromatographie d'affinité sur fibrine/Célite selon la méthode dé10 crite dans HUSAIN et Alia, PROC NAT ACAD SCI USA, Vol. 78, N 7, p 4265-4269, Juillet 1981. L'activateur de plasminogène est recueilli par élution à l'aide d'un tampon phosphate-arginine (ou lysine) contenant de l'aprotinine. L'activité totale, déterminée sur substrat chromogène S 2288 de la Société KABI, ramenée à 1 litre de surnageant de culture est de 2,5 gkatals. L'activité totale exprimée par rapport à l'urokinase sur le substrat S 2288 et ramenée à 1 litre de surnageant de 20 culture est comparable à environ 2 500 000 UI CTA d'urokinase (CTA = Committee Thrombolytic Activity). Cette purification qui isole l'activateur tissulaire de plasminogène peut être complétée par chromatographie de gel-filtration sur SEPHADEX G 150 ou ULTROGEL Ac A 44 et per25 met d'obtenir une activité spécifique supérieure à 30 000 UI CTA/mg-1 de protéines (dosage effectué sur plaque de fibrine). L'activateur purifié obtenu est ensuite concentré par ultrafiltration sur membrane n'absorbant pratiquement pas 30 les protéines (AMICON PM 10 ou Polysulfone Millipore ou fibres creuses Amicon) , cette opération de concentration étant éventuellement complétée par passage sur une colonne de SEPHADEX G 150 ou d'ULTROGEL Ac A 44. A chaque étape, le dosage de l'activateur tissulaire 35 de plasminogène est effectué d'une part sur fibrine et d'autre part sur caséine. -9 Après purification et concentration le volume du concentré obtenu à partir de 800 ml de surnageant, est de 51 ml. La teneur en protéines est inférieure à 10 sg par mi. 5 L'activité sur plaque de fibrine est de 350 UI CTA par ml, soit une activité spécifique supérieure à 35 000 Ui CTA par mg de protéines. L'activité sur substrat ckromogène S 2288 est de 11,25 gkatals par litre. L'activité sur substrat chromogène S 2288 par rapport à l'urokinase est de 12 000 UI par ml, soit une activité spécifique supérieure à 1 200 000 UI par mg de protéines. Le produit purifié mis en présence d'anticorps ig G anti-urokinase n'est pas inhibé, ce qui démontre qu'on est 15 bien en présence d'activateur tissulaire et non d'urokinase ou d'une enzyme similaire à cette dernière. La lyophilisation du produit purifié ne semble pas altérer son activité. Les poids moléculaires des activateurs obtenus con20 formément à l'invention ont été mesurés par zymographie sur gel de polyacrylamide par comparaison des bandes fibrinolytiques obtenues sur le gel, avec des produits de référence déposés en même temps sur le gel par électrophorèse. Cette technique a mis en évidence la présence de plu25 sieurs espèces moléculaires de poids moléculaires compris entre 35 000 et 105 000, la majeure partie des especes moléculaires étant comprise entre PM 50 000 et PM 100 000, avec trois taches principales à: 78 000 66 000 et 55 000, la tache majoritaire correspondant à un poids moléculaire de 000. L'activateur tissulaire de plasminogène obtenu conformément à la présente invention est en outre caractérisé 35 par: son affinité pour la fibrine; son activité plasminogène-dépendante sur la fibrine ses poids moléculaires, déterminés par SDS Page et par zymographie et éventuellement par gel-filtration; sa très faible activité sur substrat S 2244 spécifique de l'urokinase; l'absence d'inhibition par l'anticorps spécifique antiurokinase; son activité sur plaque de fibrine; son activité sur substrat S 2288. Les deux propriétés énoncées en premier peuvent se démontrer par le test de E VAIREL (cf "Progress in chemical fibrinolysis and Thrombolysis", Vol 1, p 271-280, Ed. par J F DAVIDSON, M M SAMAMA, et P C DESNOYERS, Raven Press, New-York, 1975). Outre les dispositions qui précèdent, l'invention comprend encore d'autres dispositions, qui ressortiront de la description qui va suivre. L'invention sera mieux comprise à l'aide du complément de description qui va suivre, qui se réfère à des exem20 ples de mise en oeuvre du procédé objet de la présente invention. Il doit être bien entendu, toutefois, que ces exemples de mise en oeuvre, sont donnés uniquement à titre d'illustration de l'objet de l'invention, dont ils ne consti25 tuent en aucune manière une limitation. EXEMPLES Exemple 1 Les cellules embryonnaires de poumon humain sont ensemencées dans des récipients en plastique de 150 cm 2 de 30 surface à une concentration de 104 cellules par cm 2 dans ml de milieu DMF composé de trois parties de milieu minimum essentiel de Eagle modifié par Dulbecco (Dulbecco R, Freeman G, Virology 8, 396, 1959) et d'une partie de milieu de Ham F 12 (Ham R G, Proc Nat Acad Sci US, 53, 288, 35 1965) Il est additionné de 10 % de sérum embryonnaire de veau inactivé pendant 30 minutes à 56 C, d'Hépès 10 m M, et -11 de gentamycine 40 gg/ml. Une fois la confluence cellulaire obtenue, les cellules sont conservées trois jours supplémentaires dans cet état. Le milieu de culture est alors éliminé et les cellules sont rincées 3 fois avec du tampon phosphate salin. Elles sont mises en incubation dans du milieu DMF ( 0,7 ml/105 cellules) contenant de l'insuline 10 g/ml, de la transferrine 10 gg/ml, du sélénium 2,5 10-8 M, de l'apro10 tinine 20 KIU/ml La durée d'incubation est de 18 heures à une température comprise entre 36,5 et 37,5 C. Dans ces conditions, le titre du produit brut obtenu est de 1 u CTA/ml. Exemple 2 Les cellules sont cultivées dans les mêmes conditions que dans l'exemple 1 Après trois lavages avec du tampon phosphate salin, elles sont mises en incubation dans du milieu DMF ( 0,7 ml/105 cellules) contenant de l'insuline 10 Rg /ml, de la transferrine 10 gg/ml, du sélénium 2,5 10-8 M, de 20 l'aprotinine 20 KIU/ml, de la concanavaline A 20 gg/ml. La durée d'incubation est de 18 heures à une température comprise entre 36,5 et 37,5 C. Dans ces conditions, le titre du produit brut obtenu est de 30 u CTA/ml. Exemple 3 Les cellules sont ensemencées dans les mêmes conditions que dans l'exemple 1 Une fois la confluence atteinte, les cellules sont rincées 3 fois avec du tampon phosphate salin Elles sont ensuite mises en incubation dans du milieu 30 DMF ( 0,7 ml/105 cellules) contenant de l'insuline 10 ig/ml, de la transferrine 10 gg/ml, du sélénium 2,5 10-8 M, de l'aprotinine 20 KIU/ml, de la concanavaline A 20 gg/ml La durée d'incubation est de 18 heures à une température comprise entre 36,5 et 37,5 C Au bout de ce temps, la première ré35 colte est effectuée. Les cellules sont alors remises en incubation dans du -12 milieu DMF additionné de 10 % de sérum embryonnaire de veau pendant 7 à 10 jours pour leur permettre de réatteindre la confluence après l'effet traumatisant de la concanavaline A. Une fois la confluence atteinte, le processus d'in5 duction par la concanavaline A en présence d'aprotinine est renouvelé une deuxième fois, ainsi que décrit dans l'exemple 2. Une deuxième récolte est alors effectuée Les cellules sont, de nouveau, mises en incubation 10 dans du milieu DMF additionné de 10 % de sérum embryonnaire de veau pendant 7 à 10 jours comme expliqué précédemment. Un troisième processus d'induction par la concanavaline A en présence d'aprotinine est alors mis en oeuvre et donne lieu à une troisième récolte. Les titres obtenus sont les suivants: 1 ère récolte: 30 u CTA/ml 2 ème récolte: 40 u CTA/ml 3 ème récolte: 30 u CTA/ml Exemple 4 800 ml de surnageant de culture contenant de l'aprotinine à 20 KIU/ml, provenant d'une culture sur un multitray ( 6000 cm 2). Titre 10 UI CTA/ml (plaque de fibrine) UI CTA/ml (plaque de caséine). 25 Teneur en protéines: 39 gg/ml. 1 Chromatographie sur fibrine/Célite Sur une colonne 8 X 18 cm de fibrine/Célite équilibrée en tampon phosphate 50 m M, Na Cl 300 m M, aprotinine 10 KIU/ml, EDTA 1 m M, Azide 0,02 % p H 7,4. On fait passer 800 ml de surnageant de culture. Elution par le même tampon rendu 0,2 M en arginine et contenant 0,01 % de Tween 80. On obtient 2 fractions dosées sur plaque de fibrine et substrat'chromogène S 2288. lère fraction: 900 ml à 2 363 UI/ml = 2 126 700 UI 2 ème fraction: 900 ml à 500 UI/ml =,450 000 UI. -13 (activités obtenues sur substrat chromogène S 2288 par rapport à l'urokinase). 2 Concentration. Par ultrafiltration sur membrane Millipore, ref PTCE 0001 cut-off 10 000. La fraction 1: volume 50 ml à 34 440 UI/ml = 1 722 000 UI La fraction 2: volume 16 ml à 11 550 Ui/ml = 184 000 Ul Taux de protéines: Fraction 1 concentrée inférieure à 20 gg/ml, 10 Fraction 2 concentrée inférieure à 20 ig/ml. La présence d'aprotinine dans les solutions ne permet pas d'envisager un dosage autre que sur le S 2288. 3 Chromatographie sur ULTROGEL Ac A 44. Dépôt de la fraction 1 concentrée Développement de 15 la chromatographie à l'aide de solution NH 4 HCO 3 1 M, Tween 0,01 % p H 7,4 sans aprotinine Contrôle et dosage sur plaque de fibrine Volume: 270 ml. 4 Concentration. Comme au paragraphe 2 ci-dessus. 20 Volume du concentré: 78 ml Activité sur S 2288/UK: 12 000 UI/ml UI totales: 936 000 UI. Activité sur plaque de fibrine: 350 UI CTA/ml Teneur en protéines: inférieure à 10 g/ml Activité spécifique sur plaque de fi;fine supérieure 000 UI CTA par mg de protéines. Test d'activité plasminogène-dépendant: conforme. Test sur S 2444 (spécifique urokinase): négligeable. Test d'affinité sur fibrine: conforme. Electrophorèse: Zymographie 3 bandes actives: 55 000, 66 000 et 78 000 dont la principale est environ 55 000. Pas de réaction avec le sérum anti-urokinase. Lyophilisation. Le produit est ensuite lyophilisé en présence d'un 35 stabilisant tel qu'albumine ou héparine. Alors que la quantité d'activateurs du plasminogène -14 produite naturellement par les cellules de poumon d'embryon humain est de 0,4 unité CTA/ml, l'action de stimulation exercée par la concanavaline A augmente le rendement en activateur de 20 à 40 fois et permet, après purification et 5 concentration, d'obtenir un activateur tissulaire d'activité spécifique supérieure à 35 000 UI CTA par mg de protéines, l'addition d'aprotinine permettant une stabilisation des activateurs obtenus, qui en l'absence d'aprotinine seraient très rapidement dégradés. L'on obtient par le procédé conforme à l'invention un activateur tissulaire du plasminogène à haute affinité pour la fibrine, qui ne détruit pas le fibrinogène circulant et peut donc réaliser in vivo la lyse d'un caillot à des doses thérapeutiques considérablement plus faibles (environ 30 15 fois moins) à celles nécessaires avec l'urokinase, l'activateur tissulaire étant en outre obtenu avec un bon rendement qui permet sa fabrication à l'échelle industrielle dans des conditions économiques satisfaisantes. L'action d'activation de la lyse d'un caillot exercée 20 par l'activateur tissulaire du plasminogène obtenu conformément à la présente invention, a été testée en la comparant à celle de l'urokinase dans un essai pharmacologique in vitro dont les modalités et les résultats seront décrits ci-après. Essai pharmacologique in vitro d'activation de la lyse 25 d'un caillot respectivement par l'activateur tissulaire deplasminoiène conforme à l'invention et par l'urokinase Le produit obtenu dans l'exemple 2 et de l'urokinase, ont été soumis respectivement à un test de lyse d'un caillot selon la méthode de E VAIREL décrite dans l'ouvrage déjà 30 cité Le caillot utilisé est un caillot déplaquetté pour assurer une bonne adhérence au tube à essai. Les étapes de l'expérimentation sont les suivantes: A Première expérimentation avec l'urokinase. 1 Préparation d'un caillot déplaquetté et lavage de 35 ce dernier pour élimination de toute trace de plasminogène. -15 2 Passage d'une solution contenant de l'urokinase. On ne constate pas de lyse puisqu'il n'y a pas de plasminogène. 3 Lavage. 4 Passage d'une solution de plasminogène purifié On ne constate pas de lyse En effet l'urokinase ne se fixe pas sur la fibrine et a été éliminée au cours du lavage précédent. B Deuxième expérimentation en utilisant l'activateur tissu10 laire. On réalise ensuite une deuxième expérimentation dans les mêmes conditions, en remplaçant l'urokinase de l'étape 2 par une solution d'activateur tissulaire du plasminogène obtenu selon l'exemple 2 On constate à l'étape 4 une lyse du 15 caillot de fibrine En effet, l'activateur tissulaire s'est fixé sur la fibrine et active le plasminogène au moment de son passage dans le caillot. Ainsi qu'on l'a mentionné dans le Préambule, la présence de "Human Transforming Growth Factor" ou "facteur 20 transformant de croissancehumain" dans un activateur tissulaire de plasminogène, constitue un obstacle dirimant à son utilisation en tant que médicament thrombolytique; or l'un des avantages que présente l'activateur tissulaire conforme à l'invention, est de ne pas contenir de "Human Transforming 25 Growth Factor", puisqu'il provient de cellules non transformées Cette absence de "Human Transforming Growth Factor" a été vérifiée par les Inventeurs à l'aide de la méthode décrite par J E DE LARCO et G J TODARO -dans Proc Natl. Acad Sci U S A, Vol 75, N 8, p 4001-4005, Août 1978. 30 Les résultats de ce contrôle sont les suivants: Essai sur le surnageant provenant de cultures de cellules embryonnaires de poumon humain: Réponse négative: pas de facteur transformant de croissance. Essai sur le produit brut obtenu par action de la concanavaline A en présence d'aprotinine, conformément à l'exem- -16 ple 2: Réponse négative: pas de facteur transformant de croissance Essai sur le produit brut obtenu conformément à l'exemple 5 3 à la suite du troisième processus d'induction par la concanavaline A en présence d'aprotinine: Réponse négative: pas de facteur transformant de croissance. L'activateur tissulaire de plasminogène à haute affi10 nité pour la fibrine, dépourvu de facteur transformant de croissance et présentant une activité spécifique égale ou supérieure à 35 000 u CTA/mg, obtenu conformément à la présente invention, semble donc bien constituer le médicament thrombolytique de grande valeur, sans action destructrice 15 sur le fibrinogène, dont souhaite pouvoir disposer le corps médical. -1 7 REVENDICATIONS 1 ) Procédé de production d'un activateur tissulaire de plasminogène à partir de cultures de tissus non turnoraux, caractérisé par: la mise en culture et l'incubation d'une catégorie particulière de cellules, à savoir des cellules de tissus embryonnaires, et plus particulièrement des cellules de poumon d'embryon humain dans des conditions déterminées, c'est-à-dire dans un milieu de culture approprié et en présence d'un stimulant comme la concanavaline A et d'inhibi10 teurs de protéases comme l'aprotinine et la benzamidine; la séparation du surnageant contenant l'activateur tissulaire du plasminogène, l'isolement de ce dernier par purification et éventuellement sa concentration. 2 ) Procédé selon la revendication 1, caractérisé en 15 ce que les cellules embryonnaires de poumon sont mises en culture dans un milieu approprié contenant un adjuvant de culture tel que le sérum de veau foetal ou du sérum de cheval ou un adjuvant équivalent, éventuellement en présence d'une matrice extracellulaire ou de constituants purifiés de 20 nature extra-cellulaire, puis sont incubées dans le même milieu de culture que ci-dessus, mais dépourvu de sérum de veau foetal et additionné d'insuline, de transferrine et de sélénium, d'un stimulant comme la concanavaline A et d'un inhibiteur de protéases comme l'aprotinine ou la benzamidi25 ne. 3 ) Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 et 2, caractérisé en ce que la concanavaline A est présente dans le milieu de culture à une concentration optimale d'environ 5 à 20 gg/ml et l'aprotinine ou inhibiteur analo30 que est présente dans le milieu de culture à une concentration optimale équivalant à environ 20 à 50 KIU/ml. 4 ) Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisé en ce que, pour permettre une réutilisation des cellules traitées par la concanavaline A au cours 35 d'une première opération d'induction de production d'activateur tissulaire de plasminogène, pour au moins une deuxième -18 opération de production d'activateur tissulaire de plasminogène, on réincube la culture de cellules traumatisées par la concanavaline A, après séparation du surnageant, dans un milieu de culture approprié contenant du 5 sérum de veau foetal pendant une durée suffisante pour restaurer les cellules dans leur intégrité, puis on renouvelle le processus d'induction par la concanavaline A en présence d'aprotinine, dans le milieu de culture précité dépourvu de sérum de veau foetal et contenant de l'insuline, 10 de la transferrine et du sélénium, et on sépare le nouveau surnageant qui contient l'activateur de plasminogène, les restauration et réinduction des cellules pouvant être opérées à plusieurs reprises, et au moins à trois reprises. ) Procédé selon l'une quelconque des revendications 15 1 à 4, caractérisé en ce que le surnageant de culture est additionné d'un agent tensio-actif approprié propre à empêcher l'adsorption de l'activateur présent dans le surnageant sur les parois des récipients de traitement. 6) Procédé selon l'une quelconque des revendications 20 1 à 5, caractérisé en ce que le surnageant de culture séparé de la culture est purifié par chromatographie d'affinité sur une préparation de fibrine déposée sur une matrice solide adsorbante, en terre de diatomées, du type de la Célite, qui adsorbe sélectivement l'activateur tissulaire du plasminogè25 ne à haute affinité, lequel est élue de la colonne adsorbante à l'aide d'une solution tampon appropriée contenant de l'arginine ou de la lysine. ) Procédé selon la revendication 6, caractérisé en ce que l'activateur de plasminogène purifié sur fibrine/Cé30 lite est concentré par ultrafiltration, puis soumis à une purification complémentaire par gel-filtration. 8 ) Activateur tissulaire du plasminogène caractérisé en ce qu'il est obtenu par le procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 7. 9 ) Activateur tissulaire du plasminogène selon la revendication 8, caractérisé en ce qu'il est dépourvu de -1 9 facteur transformant de croissance, en ce qu'il se compose d'une pluralité d'espèces moléculaires présentant des poids moléculaires compris entre 35 000 et 105 000 daltons, la majeure partie des espèces moléculaires se situant entre 50000 5 et 80 000 daltons avec des espèces majoritaires de poids moléculaires 55 000, 66 000 et 78 000, en ce qu'il ne présente pas d'affinité pour les anticorps anti-urokinase, en ce qu'il est dépourvu d'activité sur les substrats analytiques protidiques spécifiques de l'urokinase, en ce qu'il possède 10 une haute affinité pour la fibrine et présente une activité spécifique égale ou supérieure à 35 000 u CTA/ml.