FR 2523445 A1 19830923 FR 8204547 A 19820317 Nouveaux conjugués associant, par liaison covalente, une enzyme et un anticorps, et associations médicamenteuses utilisant lesdits conjugués. La présente invention concerne des produits nouveaux qui sont des conjugués associant par liaison covalente une enzyme et un anticorps ou fragments d'anticorps, et les associations médicamenteuses, avec une immunotoxine, contenant lesdits produits nouveaux. Les produits nouveaux selon la présente invention sont donc des conjugués construits par liaison covalente d'une enzyme spé- cifique avec des anticorps ou fragments d'anticorps dirigés contre un antigène porté par des cellules-cibles. Dans la suite de ce brevet de tels composés seront désignés sous le nom de conjugués immunoenzymatiques. Les conjugués immunoenzymatiques sont des molécules mixtes artificielles dans lesquelles l'enzyme est associée par liaison covalente à un anticorps dirigé contre un antigène porté par les cellules-cibles. Les enzymes utilisées sont des composés connus, L'anti- corps utilisé sera soit de caractère polyclonal s'il résulte d'une ummunisation conventionnelle conduite chez l'animal, soit de caractère monoclonal s'il est produit par un clone de cellules hybrides obtenues par fusion entre lymphocytes et cellules de myelome Cet anticorps pourra être utilisé, soit sous la forme de molécules entières d'immu- noglobuline comportant la capacité à reconnaître l'antigène choisi, soit sous la forme de tout fragment de ces molécules d'immunoglobu- line ayant conservé la capacité à reconnattre l'antigène choisi, et en particulier les fragments connus sous les appellations de F(ab')2, Fab et Fab'. Le couplage chimique entre l'anticorps (ou fragment d'anticorps) et l'enzyme peut être réalisé par de nombreuses méthodes sous réserve que la méthode choisie préserve les activités biologiques respectives des deux com- posants du conjugué: l'anticorps et l'enzyme assure au procédé une reproductibilité satisfaisante et un bon rendement de couplage permette de maîtriser la valeur du rapport enzyme/anticorps dans le conjugué obtenu conduise à un produit stable et soluble dans l'eau. Parmi les méthodes répondant a ces caractéristiques, il faut privilégier celles qui mettent en oeuvre une ou plusieurs fonctionsthiol pour l'établissement de la liaison entre les deux pro- téines Ces fonctions thiol peuvent appartenir indifféremment à l'une ou l'autre des protéines à coupler, ou bien être artificiellement introduites sur l'une ou l'autre de ces protéines qui ne possède pas naturellement de thiol. Si un ou des groupements thiol doivent ainsi être arti- ficiellement introduits sur l'une des protéines, cela pourra être réalisé par action sur cette protéine de l'anhydride S-acétylmercapto- succinique qui est capable d'acyler-des fonctions aminées de la pro- téine On pourra ensuite libérer les fonctions thiol par élimination du radical acétyl protecteur, par action de l'hydroxylamine, ainsi que cela a été décrit lArchives of Biochemistry and Biophysics 119, 41-49, ( 1967) l Une dialyse permet d'éliminer les excès de réactifs ainsi que les produits de réaction de faible masse moléculaire D'autres méthodes décrites dans la littérature peuvent aussi être utilisées pour l'in- troduction de fonctions thiol dans une des protéines à coupler. Selon l'invention, celle des deux protéines qui seule possède une ou plusieurs fonctions thiol est mise en réaction avec l'autre protéine dans laquelle auront été préalablement introduites une ou plusieurs fonctions succeptibles de réagir avec les thiols, en milieu aqueux, de p H compris entre 5 et 9, et à une température ne dépassant par 30 C, pour fournir une liaison covalente stable et définie Cette liaison covalente sera en particulier, soit une liai- son disulfure, soit une liaison thioéther On désigne par la suite par Pl celle des deux protéines qui porte la ou les fonctions thiol et par P 2 l'autre protéine à coupler. 1) Cas de la liaison disulfure La préparation du conjugué peut alors être représentée par le schéma P 1-SH + P 2-S-S-X > Pl-S-S-P + XSH dans lequel: -S-S-X désigne un groupement disulfure mixte activé dont X est le radical activateur. La protéine P 2 substituée par un atome de soufre activé est obtenue à partir de la protéine P 2 elle-même, par substitution à l'aide d'un réactif lui-même porteur d'un atome de soufre activé selon le schéma: P 2 + Y-R-S-S-X P 2-R-S-S-X dans lequel: P 2 désigne la protéine à substituer Y représente une fonction permettant la fixation covalente du réactif sur la protéine R désigne un groupement pouvant porter simultanément les substi- tuants Y et -S-S-X X désigne le radical activateur. Le groupement fonctionnel Y est une fonction capable de se lier de façon covalente avec l'une quelconque des fonctions portées par les chaînes latérales des aminoacides constitutifs de la protéine à substituer Parmi celles-ci, les fonctions aminées termi- nales des radicaux lysyle contenues dans la protéine sont particuliè- rement indiquées Dans ce cas, Y pourra notamment représenter: un groupe carboxylique qui pourra se lier aux fonctions aminées de la protéine en présence d'un agent de couplage tel qu'un carbodi- imide et notamment un dérivé soluble dans l'eau comme l'éthyl-1 (diéthylamino-3 propyl)-3-carbodiimide, un chlorure d'acide carboxylique qui est susceptible de réagir directement avec les fonctions aminées pour les acyler, un ester dit "activé" tel qu'un ester d'ortho ou para-, nitro ou dinitro-phényle ou encore un ester de N-hydroxysuccinimide qui réagit directement avec les fonctions aminées pour les acyler, un anhydride interne d'un diacide carboxylique tel, par exemple, l'anhydride succinique qui réagit spontanément avec les fonctions amines pour créer des liaisons amides, NH un groupement imidoester -C o R est un groupe alkyle OR 1 réagissant avec les groupes aminés de la protéine selon la réaction: H HN N Prot-NH 2 + C-R 2 Prot NH-C-R 2 + R 1 OH RO O Le radical -S-S-X désigne un disulfure mixte activé capable de réagir avec un radical thiol libre En particulier dans le disulfure mixte, X pourra désigner un groupe pyridyl-2 ou pyridyl-4 éventuellement substitué par un ou des radicaux alkyle, halogène, carboxylique X peut aussi désigner un groupe phényle de préférence substitué par un ou des groupes nitro ou carboxylique X peut encore représenter un groupe alcoxycarbonyle tel que le groupe méthoxycar- bonyle. Le radical R désigne tout radical capable de porter simultanément les substituants Y et S-S-X Il devra être choisi de façon à ne pas comporter de fonctions succeptibles d'interférer au cours des réactions ultérieures avec les réactifs utilisés et les produits synthétisés En particulier, le groupe R peut être un groupe -(CH 2) avec N compris entre 1 et 10 ou encore un groupe: 2 n R,CH- 3, CH- l R dans lequel R 4 désigne l'hydrogène ou un groupe alkyle ayant de 1 à 8 atomes de carbone et R 3 désigne un substituant inerte vis-a-vis des réactifs utilisés ultérieurement tel qu'un groupe carbamate -NH-C-OR 5 ou R 5 désigne un groupe alkyle droit ou ramifié ayant de o O 1 à 5 atomes de carbone et notamment le groupe tertiobutyle. La réaction du composé Y-R-S-S-X avec la protéine P est effectuée en phase liquide homogène le plus souvent dans l'eau ou une solution tampon Lorsque la solubilité des réactifs l'exige, il est possible d'ajouter au milieu réactionnel jusqu'à 20 % en volume d'un solvant organique miscible à l'eau tel qu'un alcool et notamment le butanol tertiaire. La réaction est effectuée à température ambiante pen- dant un temps variant de quelques heures à 24 heures Après quoi, une dialyse permet d'éliminer les produits de faible masse moléculaire et, en particulier, les excès de réactifs Ce procédé permet d'intro- duire un nombre de groupements substituants par mole de protéine habituellement compris entre 1 et 15. En utilisant de tels composés, le couplage avec la protéine Pl est réalisé par mise en présence en solution aqueuse des deux protéines à une température ne dépassant pas 30 C pendant un temps variant de quelques heures à un jour La solution aqueuse obte- nue est dialysée pour éliminer les produits de faible masse molecu- laire, puis le conjugué peut être purifié par diverses méthodes connues. 2) Cas de la liaison thioéther La préparation du conjugué consiste alors à faire réagir P 1-SH avec la protéine P 2 sur laquelle aura préalablement été introduit un radical maléimide. La réaction est alors représentée par le schéma -SH + -NH-CO-Z- ) NH-C 4-Z-N dans lequel Z représente une structure d'espacement, aliphatique ou aromatique comportant de 1 à 10 atomes de carbone. La protéine P 2 substituée par le maléimide est obtenue à partir de la protéine P 2 elle-même, par substitution de fonctions aminées de la protéine à l'aide d'un réactif lui-même porteur du groupement maléimide, selon le schéma P 2 NH 2 + Y 17 Z-N > P 2-NH-C 0-Z-N dans lequel Y 1 représente soit un groupe carboxylique, la réaction étant alors effectuée après activation de la fonction carboxylique en présence d'un agent de couplage tel qu'un carbodiimide et notamment un dérivé soluble dans l'eau tel que l'éthyl-l (diéthylamino-3 propyl)-3carbodiimide, soit un ester dit "activé" tel qu'un ester d'ortho ou para-, nitro ou dinitrophényle, ou encore un ester de N-hydroxysuccinimide qui réagit directement avec les fonctions aminées pour les acyler. La préparation de tels réactifs est notamment décrite dans Helvetica Chimica Acta 58, 531-541, ( 1975) D'autres réactifs de la même classe sont commercialement disponibles. o La réaction du composé Y 1 Z-N j avec la protéine P 2 est effectuée en phase liquide homogène le plus souvent dans l'eau ou une solution tampon Lorsque la solubilité des réactifs l'exige, il est possible d'ajouter au milieu réactionnel jusqu'à 207 en volume d'un solvant organique miscible à l'eau tel qu'un alcool et notamment le butanol tertiaire. La réaction est effectuée à température ambiante pendant un temps variant de quelques heures à 24 heures Après quoi, une dialyse permet d'éliminer les produits de faible masse moléculaire et, en particulier, les excès de réactifs Ce procédé permet d'introduire un nombre de groupements substituants par mole de protéine habituelle- ment compris entre 1 et 15. En utilisant de tels composés, le couplage avec la pro- téine Pl est réalisé par mise en présence en solution aqueuse des deux protéines à une température ne dépassant pas 30 C pendant un temps variant de quelques heures à un jour La solution obtenue est dialysée pour éliminer les produits de faible masse moléculaire, puis le conju- gué peut être purifié par diverses méthodes connues. De tels conjugués immunoenzymatiques peuvent être réalisés avec n'importe quelle enzyme Toutefois, en vue de leur utilisation thérapeutique qui sera exposée ci-après, les enzymes préférées sont celles capables de libérer des ions ammonium à partir de substrats naturels bien tolérés dans les organismes animaux supé- rieurs. Selon la classification internationale telle qu'elle a été présentée par exemple dans "Comprehensive Biochemistry" tome 13, 3 e édition ( 1973), M Florkin et E H Stortz Editors (Elsevier), les enzymes utilisables en thérapeutique dans le cadre de la présente invention se retrouvent principalement: dans le groupe 1 (oxydoréductases) et en particulier dans le sous-groupe 1-4 contenant les aminoacidedéshydrogénases et les amine- oxydases; dans le groupe 3 (hydrolases) et en particulier dans le sous- groupe 3-5 contenant les enzymes hydrolysant les amides, amidines et autres liaisons C-N (à l'exclusion des liaisons peptidiques); dans le groupe 4 (lyases) et en particulier dans les sous- groupes 4-2 et 4-3 contenant les enzymes catalysant des réactions de dégradation avec formation de composés insaturés. On indique ci-après la liste des enzymes préférées pour réaliser des conjugués immunoenzymatiques selon l'invention Dans chaque cas, on a indiqué également le codage utilisé pour désigner ces enzymes dans la nomenclature internationale. 1-4-1-1 alanine déshydrogénase 1-4-1-3 glutamate déshydrogénase NAD (P)+ 1-4-1-5 L-amino-acides déshydrogénase 1-4-3-2 L-amino-acides oxydase 3-51-1: asparaginase 3-5-1-2 glutaminase 3-5-1-4:amidase 3-5-1-5: uréase 3-53-6: arginine désiminase 3-5-4-4: adénosine désaminase 3-5-4-6: adénosine monophosphate désaminase 3-5-4-21: créatinine désaminase 4-2-1-13:Lsérine déshydratase 4-2-1-16:L-théoninedéshydratase 4-3-1-1: aspartateammonia-lyase (ou aspartase) 4-3-1-3: histidine-ammonia-lyase (ou histidase) 4-3-1-5: phénylalanine-ammonia-lyase. Un second aspect de l'invention concerne l'utilisation en thérapeutique humaine de tels conjugués immunoenzymatiques. Dans les demandes de brevets français antérieures, portant notamment les numéros 78 27 838, 79 24 655, 81 07 596 et 81 21 836, on a décrit la préparation de prodoits anticancéreux dits conjugués obtenus par couplage, par liaison covalente, de la chaîne A de la ricine avec des anticorps ou fragments d'anticorps dirigés contre un antigène porté par une cellule à détruire Les produits de ce type sont désignés dans la présente demande sous le nom générique d'immunotoxines. Dans la demande française 81 21 836 on a décrit en outre la propriété des ions ammonium (sous la forme d'un quelconque de leurs sels et en particulier le chlorure) de potentialiser de façon efficace l'action cytotoxique de ces immunotoxines. La propriété des sels d'ammonium de potentialiser l'activité cytotoxique sélective des immunotoxines présente de nom- breux avantages dans deux types de situations: - a) Chaque fois qu'une immunotoxine est utilisée en tant qu'agent cytotoxique sélectif in vitro pour détruire les cellules- cibles. Dans le cas d'utilisation thérapeutique, cette situa- tion se rencontre notamment lorsque l'immunotoxine est utilisée comme agent cytotoxique dans le traitement de la moelle osseuse de patients leucémiques à qui la moelle osseuse ainsi traitée sera ultérieurement transplantée, ainsi que cela a été décrit dans la demande de brevet déposée en France sous le N O 81 21 826 par la demanderesse. b) Lorsque l'immunotoxine est utilisée in vivo en tant qu'agent thérapeutique chez l'homme, chaque fois qu'il est possible d'administrer au malade, préalablement, simultanément ou ultérieure- ment à l'immunotoxine, un sel d'ammonium assurant la potentialisa- tion de l'effet de l'immunotoxine ainsi que cela a été décrit dans la demande de brevet indiquée ci-dessus. Toutefois, dans ce dernier cas d'utilisation, in vivo de l'immunotoxine, l'emploi, également in vivo, d'un sel d'ammonium afin de bénéficier de l'effet potentialisateur connaît certaines limi- tations inhérentes à la toxicité propre des ions ammonium et au fait qu'il est relativement malaisé de maintenir de façon durable une concentration suffisante en ions ammonium dans les liquides biolo- giques du malade. Les travaux poursuivis par la demanderesse ont permis de réduire de façon très importante les limitations liées à l'utili- sation des ions ammonium tout en conservant les avantages de la poten- tialisation de l'activité cytotoxique et de l'accélération des ciné- tiques d'action des immunotoxines par ces ions Ces travaux ont en effet montré que l'effet potentialisateur et accélérateur obtenu par addition aux immunotoxines d'un sel d'ammonium à la concentration convenable pouvait aussi bien être obtenu si les ions ammonium étaient produits dans l'environnement immédiat des cellules-cibles par une réaction enzymatique à partir d'un substrat non toxique naturellement présent ou artificiellement apporté dans l'environnement de ces cel- lules. En outre, ces travaux ont montré que ce résultat est obtenu de façon particulièrement efficace lorsque l'enzyme qui cata- lyse la réaction produisant les ions ammonium est coupiéeà un anti- corps (ou fragment d'anticorps) possédant la capacité de reconnaître un antigène présent à la surface des cellules-cibles. Cette façon de procéder entraîne plusieurs avantages de grande importance et notamment les suivants: a) L'enzyme utilisée est ainsi concentrée sur la membrane des cellules-cibles en raison de l'affinité de l'anticorps (ou fragment d'anticorps) pour un antigène présent sur cette membrane De ce fait, la libération d'ions NH 4 comme produit de la réaction enzymatique n'aura lieu que dans l'environnement immédiat de la membrane des cellules-cibles, ce qui réduit les risques liés à la toxicité géné- rale des ions ammonium, tout en facilitant l'interaction de ces ions avec la cellule-cible telle qu'elle est nécessaire pourquela poten- tialisation se produise. b) La réaction enzymatique produisant les ions NHU d'une façon continue aussi longtemps que le substrat est présent, et ce substrat étant choisi pour être non toxique, ce procédé permet une très grande souplesse d'utilisation du mécanisme de potentialisation En effet, Si le substrat est endogène et a une concentration suffi- sante, l'administration du conjugué immunoenzymatique potentialisateur pourra être faite avant, ou en même temps, ou après l'administration de l'immunotoxine, selon les modalités optimales à définir pour chaque patient. Si en outre l'enzyme est choisie de telle sorte que son substrat n'existe pas dans le sang et les liquides extracellulaires à une concentration assez élevée et que ce substrat doive donc aussi être administré au malade, la souplesse maximale d'utilisation du médicament apparait alors puisqu'on peut régler librement et indépen- damment le moment d'administration, la durée d'administration et la dose de chacun des trois composants administrés, à savoir l'immuno- toxine, le conjugué immunoenzymatique et le substrat, selon les moda- lités optimales pour le traitement de chaque patient. c) Dans les conditions indiquées ci-dessus, on dirigera de façon sélective vers les cellules-cibles au moins deux substances effec- trices indispensables au résultat recherché: d'une part la chaîne A de ricine qui est l'effecteur cytotoxique inclus dans le conjugué dit immunotoxine d'autre part l'enzyme qui est un constituant essentiel du système potentialisateur, inclus dans le conjugué immunoenzyma- tique. Ces substances effectrices sont dans tous les cas couplées, en vue de leur pilotage et de leur fixation sélective sur les cellules-cibles, à des anticorps (ou fragments d'anticorps) recon- naissant des antigènes présents à la surface des cellules-cibles Si l'on dispose d'un anticorps reconnaissant un antigène strictement spé- cifique de la population cellulaire à détruire, on peut alors utiliser le même anticorps pour le couplage aux différents effecteurs Toute- fois, dans le cas le plus général, on a intérêt à choisir des anticorps différents, reconnaissant des antigènes différents mais portés en commun par les cellules-cibles Ainsi, même si chacun de ces antigènes n'est pas strictement spécifique des cellules-cibles, la probabilité que les deux antigènes choisis soient présents ensemble sur des cellules-non-cibles devient très faible et l'on dispose ainsi d'un moyen extrêmement puissant pour augmenter encore le caractère spéci- fique de la cytotoxicité des immunotoxines. Les exemples suivants illustrent l'invention sans en limiter la portée. 1 L Exemple 1 Conjugué immunoenzymatique obtenu par réaction entre un anticorps antidinitrophényle substitué par un groupe disulfure activé et une uréase d'origine végétale. a) Anticorps anti-dinitrophényle (anti-DNP) Cet anticorps est un anticorps monoclonal qui a été purifié par des techniques conventionnelles à partir du liquide d'ascite de souris de souche Balb/C auxquelles a été transplanté l'hybridome F 9. Cet hybridome a lui-même été obtenu par fusion entre des cellules spléniques de souris de souche Balb/C immunisées à l'aide de y-globuline bovine sur laquelle ont été préalablement fixes radicaux DNP par mole avec des cellules de la lignée de mydlome mutin NS 1, et isolé par clonage, selon les techniques classiques. L'anticorps obtenu est une immunoglobuline de classe G et d'isotype 2 b dont la constante d'affinité (mesurée pour le ligand 6-DNP-lysine) est de 1,8 10 M 1 b) Anticorps anti-DNP activé Ce produit a été obtenu à partir de l'anticorps ci- dessus, selon une technique analogue à celles décrites dans les demandes antérieures n 78 27 838 et additif 79 24 655, n 81 07 596 et n 81 21 836 On a ainsi obtenu 20 mg d'anticorps anti-DNP possé- dant 1,2 groupement activateur par mole. c) Uréase L'enzyme utilisée est l'uréase de provenance SIGMA (type VII, référence U 0376), titrant 170 unités par mg Une unité est la quantité d'enzyme qui permet la libération de 1 micromole de NH 4 par minute à 20 C et à p H 7,0, à partir d'urée. Cette enzyme possède naturellement 27 groupements thiol par molécule de poids moléculaire 480 000 Ces groupements thiol, titrables par la méthode d'ELIMAN, ne sont pas tous nécessaires à l'activité enzymatique Certains peuvent donc servir à assurer le couplage avec l'anticorps activé. d) Couplage de l'anticorps et de l'enzyme 5 mg d'uréase sont dissous dans 0,625 ml de solution d'anticorps activé à 7,2 mg/ml dans le tampon phosphate 0,125 M, p H 7,0, soit 4,5 mg d'anticorps activé et on effectue l'incubation à c C pendant 14 heures. On chromatographie le mélange réactionnel sur une colonne de gel de Sepharose 6 B (Pharmacia) équilibrée dans un tampon PBS (phosphate 10 m M, chlorure de sodium 140 m M, p H 7,4) L'élution est suivie par mesure de la densité optique à 280 nm et par mesure de l'activité uréase selon la technique de SUMER lMlethods in Enzymology vol II, p 378, S B Colowick et N O Kaplan Ed, Academic Press, 1955 l. On réunit les fractions contenant les plus fortes activités uréase, et l'on obtient ainsi 8 ml de solution de conjugué à 6,5 unités/ml Si une fraction aliquote de cette solution est absor- bée sur une colonne de sérum albumine bovine substituée par six radi- caux DNP par mole et insolubilisée sur une matrice de Sepharose 4 B préalablement activé par le bromure de cyanogène, on constate que l'activité uréase reste entièrement absorbée sur la colonne Ceci démontre en même temps que l'anticorps présent dans le conjugué a conservé sa capacité à reconnaître l'haptène DNP et que l'uréase est bien couplée a cet anticorps. Exemple 2 Potentialisation de l'immunotoxine anti T 65 Le conjugué selon l'invention, obtenu comme indiqué précédemment, a été étudié en ce qui concerne ses propriétés biolo- giques et plus spécialement sa capacité à potentialiser l'activité de l'immunotoxine anti T 65 dans un modèle cellulaire approprié. Ce modèle est constitué par des cellules de la lignée lymphoblastotde humaine CEM qui portent naturellement l'antigène T 65. Cet antigène, contre lequel est dirigée l'immunotoxine utilisée, cons- titue le premier antigène-cible du modèle On peut, en outre, marquer ces cellules à l'aide de l'haptène trinitrophényle (TNP) selon la technique décrite dans la demande antérieure n 78 27 838 Cet haptène est très bien reconnu par l'anticorps anti-DNP contenu dans le conjugué immunoenzymatique étudié et constitue donc le deuxième antigène-cible du modèle Il a été démontré que le marquage des cellules par i'haptène TNP ne modifie pas la viabilité des cellules et ne perturbe pas la fixation sur ces cellules de l'immunotoxine anti-T 65. La propriété fondamentale des immunotoxines étant d'inhiber la synthèse protéique des cellules-cibles, le test utilisé consiste d mesurer l'effet des substances étudiées sur l'incorpora- tion de C-leucine dans les cellules cancéreuses en culture. Cette mesure est effectuée selon une technique adaptée de celle décrite dans Journal of Biological Chemistry, 1974, 249 ( 11), 3557-3562 utilisant le traceur 14 C-leucine pour la détermination du taux de synthèse protéique La détermination de la radioactivité incor- porée est effectuée ici sur les cellules entières isolées par filtra- tion. A partir de ces déterminations, on peut tracer les courbes effets/doses présentant en abscisse la concentration molaire en chaîne A des substances étudiées et en ordonnée l'incorporation de 14 C-leucine exprimée en pourcentage de l'incorporation des cellules témoins en l'absence de toute substance affectant la synthèse protéique. On peut ainsi déterminer pour chaque substance étudiée la concentration qui inhibe 507 % de l'incorporation de 14 C-leucine ou "concentration inhibitrice 50 " (CI 50). Les différents essais de cette expérience ont été conduits comme suit Les résultats expérimentaux correspondants sont présentés dans la figure 1. a) Des cellules CEM sont incubées 18 heures à 370 C en présence de concentrations connues de ricine ou de chaîne A isolée, utilisées à titre de substances de référence, puis ces cellules sont soumises à l'étape d'incorporation du traceur radioactif Les CI 50 obtenues sont respectivement 4 10 M et 4,5 10 8 M pour la ricine et la chaîne A Il a été montré par ailleurs que ces valeurs sont indistinguablesdecelles que l'on obtient sur cellules CEM marquées par l'haptène TNP. b) Des cellules CEM marquées par le TNP sont incubées 18 heures A 370 C en présence d'une immunotoxine à spécificité anti- DNP obtenue comme indiqué dans la demande précédente N O 78 27 838 et addition 79 24 655, puis soumises à l'étape d'incorporation du traceur radioactif La forme de la courbe de cytotoxicité obtenue -9 et la valeur de la CI 50 ( 1,5 10 M) montrent que ces cellules sont normalement sensibles à l'effet cytotoxique de l'immunotoxine anti-DNP, démontrant ainsi que le marquage par le TNP de ces cellules est correctement effectué. c) Des cellules CEM marquées par le TNP sont d'abord incubées pendant 1 heure à 4 C en présence d'uréase non conjuguée a raison de 4 U/ml, puis sont lavées, incubées 18 heures A 37 C en présence de l'immunotoxine anti T 65 et d'urée 5 m Mt et enfin soumises à l'étape d'incorporation du traceur radioactif La CI 50 obtenue -9 est 5 10 M Cette valeur est identique à celle que l'on obtient en utilisant dans les mêmes conditions des cellules CEM non marquées au TNP, en l'absence de traitement par l'uréase et en l'absence d'urée dans le milieu d'incubation après lavage de l'uréase Cet essai montre que l'incubation en présence d'uréase non conjuguée n'entraîne aucune liaison de l'uréase aux cellules et de ce fait aucune potentialisa- tion de l'effet de l'immunotoxine anti T 65. d) Des cellules CEM marquées par le TNP sont d'abord incubées pendant 1 heure à 4 C en présence du conjugué immunoenzyma- tique décrit précédemment, utilisé à la concentration de 6,5 U/ml Il a été vérifié par ailleurs que ce conjugué, employé dans ces condi- tions, ne présente aucune cytotoxicité propre sur les cellules utili- sées Ces cellules sont ensuite lavées pour éliminer tout conjugué qui ne serait pas fixé, puis elles sont incubées 18 heures à 37 C en présence de l'immunotoxine anti T 65 et d'urée 5 m M Elles sont enfin soumises à l'étape d'incorporation du traceur radioactif La CI 50 obtenue est 3,5 10 13 M. Ce résultat montre que l'effet potentialisateur du conjugué immunoenzymatique augmente d'environ 14 000 fois l'activité cytotoxique de l'immunotoxine sur les cellules-cibles Cet essai démontre que cet effet potentialisateur implique la fixation du conjugué immunoenzymatique sur l'antigène correspondant à sa spéci- ficité immunologique Cette fixation résiste au lavage des cellules et laisse à la surface de celles-ci de l'uréase enzymatiquement active + qui produit des ions NH 4 à partir de l'urée présente dans le milieu d'incubation avec l'immunotoxine, ce qui entraîne l'effet potentiali- + sateur bien connu des ions NH 4 L'effet de potentialisation obtenu est tout à fait analogue à celui qui a été précédemment démontré par addition de chlorure d'ammontum 10 m M au milieu d'incubation. Comme dans le cas d'une addition artificielle de chlorure d'ammonium, cet effet potentialisateur n'est obtenu ni avec la ricine, ni avec la chaîne A de ricine, ni avec une immunotoxine non spécifique des cellules étudiées. Dans les conditions de cet exemple, l'activité cyto- toxique de l'immunotoxine anti T 65, en présence du conjugué immuno- enzymatique utilisé, est environ 130 000 fois celle de la chaîne A de ricine et elle dépasse même en puissance celle de la ricine d'un facteur d'environ 11 fois. On peut donc utiliser en tant que médicament en théra- peutique humaine l'association constituée par une immunotoxine et un conjugué immunoenzymatique. Les nouveaux médicaments selon l'invention sont condi- tionnés pour être utilisés par voie injectable et de préférence par voie intraveineuse Ils peuvent âtre utilisés pour le traitement des affections, cancéreuses ou nonqui seraient sensibles à l'anticorps utilisé pour la préparation de l'immunotoxine Ils seront employés à des doses et dans des conditions qu'il conviendra de déterminer dans chaque cas en fonction du sujet et de la nature de l'affection à traiter. RE V E N D I CA T IONS 1 Conjugués immunoenzymatiques, caractérisés en ce qu'ils résultent d'un couplage chimique, par liaison covalente, entre un anticorps ou un fragment d'anticorps ayant conservé la capacité de reconnaître l'antigène choisi et un enzyme capable de libérer des ions ammonium & partir de substrats naturels bien tolérés dans les organismes animaux supérieurs. 2 Conjugués selon la revendication 1, caractérisés en ce que la liaison covalente est une liaison disulfure. 3 Conjugués selon l'une des revendications 1 et 2, carac- * térisés en ce que la liaison covalente est une liaison thioéther. 4 Procédé pour la préparation de conjugués selon la revendication 2, caractérisé en ce que l'on réalise la réaction d'une protéine possédant une fonction thiol, soit P 1 SH, avec une autre pro- téine P 2 dans laquelle aura été introduite au moins la fonction com- portant un pont disulfure et un radical réagissant avec le thiol, soit P 2-S-S-X, ladite réaction étant effectuée en milieu aqueux, à p H compris entre 5 et 9 et à une température inférieure à environ 30 C. Procédé pour la préparation de conjugués selon la revendication 3, caractérisé en ce qu'on fait réagir une protéine possédant une fonction thiol, à savoir P 1 SU avec une autre protéine P 2 dans laquelle aura été introduitela fonction maléimide, à savoir: P -NU-CO-Z- dans laquelle Z représente une struc re d'espacement, la réaction étant effectuée en milieu aqueux, à une température inférieure à environ 30 C. 6 Association médicamenteuse caractérisée en ce qu'elle comporte au moins une-immunotoxine et au moins un conjugué immuno- enzymatique selon l'une des revendications 1 à 3. 7 Association selon la revendication 6, caractérisée en ce qu'elle est conditionnée de façon à être utilisée par voie injec- table et de préférence par voie veineuse.