FR 2492404 A1 19820423 FR 8022538 A 19801022 La présente invention a pour objet un procédé de production ou de biotransformation de métabolites par des cellules végé- tales. On entend par métabolites des produits de biosynthèse, de biotransformation ou de biodégradation réalisés par des cel lules végétales. Ce procédé est caractérisé par le fait que ce cellules sont placées dans un milieu liquide non agité en l'absence de tout support de fixation ou d'inclusion. Il est connu que des cellules végétales cultivées in vitro peuvent,dans certains cas,biosynthétiser ou biotransformer des métabolites d'intérêt économique ( ZENK M.H.: The im- pact of plant cell culture on industry: in THORPE T.A.(Ed) The International Association for plant tissue culture - Calgary 1978 (pp.1-14). L'exploitation industrielle de ce potentiel est actuellement limitée du fait du prix de revient des cultures de cellules végétales lorsqu'elles sont pratiquées dans des bioréacteurs traditionnels. Ce prix de revient beaucoup plus élevé que celui des procédés utilisant des microorganismes est prin- cipalement dû à la durée des cultures,elle-même engendrée par la lenteur de prolifération de l'organisme. A titre d'exemple, les taux de croissance maxima et les temps de génération de divers microorganismes et de cellules végétales sont rapportés dans le tableau ci-dessous Le taux de croissance maximum est représenté par le rapport ^ Masse /Masse. Temps bactérie levure champignon cellule filamenteux végétale temps de génération 0,3 1,5 3 24 tg en h taux de croissance magnuma2,3 0,46 0,23 0, 0287 Pm (h 1) Cette comparaison a peu de sens sur le plan biologique car elle ne tient pas compte de la taille des organismes. Cependant, sur un plan opérationnel, il est clair que la cellule végétale est l'organisme le plus défavorisé pour la réalisation de procédés biotechnologiques, du moins si la production recherchée est directement dépendante de la pro- duction de biomasse. De ce fait des procédés faisant appel à l'exploitation du milieu nutritif ont été étudiés et il a clairement été montré ( PETIARD V. 1980, Physiologie Végétale 18,2,331-337) que certaines souches de tissus peuvent excréter les métabo- lites qu'elles ont biosynthétisés dans le milieu nutritif. Un de ces procédés consiste en la réalisation de réacteurs de cellules immobilisées soit par inclusion dans des gels d'alginate ( ALFERMANN A.W., SCHULLER I.and REINHARD E. Planta Medica, 1980, page 281; BRODELIUS P., DEUS B., MOSBACH K., ZENK M.H., Febs.., Letters, 103,1, 93-97) soit par fixation sur des supports divers. L'objet de la présente invention est un procédé faisant appel au même type de réacteur mais en l'absence de tout moyen d'immobilisation des cellules végétales. Les cellules végétales sont placées sous forme d'agrégats cellulaires de taille variable ( allant de la cellule isolée au cal) dans un milieu liquide non agité. Le milieu est alors mis en circulation pour assurer la nutrition, l'oxygé- nation et l'extraction éventuelle des métabolites excrétés. La biomasse reste décantée dans le réacteur grâce à un filtre de nature variable (verre fritté, toile d'acier inoxydable, toile de nylon, etc..) La taille des agrégats permet, compa- rativement aux microorganismes, de minimiser les phénomènes de colmatage. Sur la figure 1, est représenté un modèle d'appareillage. Tout autre modèle permettant la culture de cellules végé- tâles dans un milieu liquide non agité et en l'absence de tout moyen de fixation ou d'inclusion des cellules peut être utilisé pour la mise en oeuvre de l'invention. Le procédé de la présente invention peut être appliqué aux cellules végétales de l'ensemble des espèces de végétaux dits supérieurs ou phanèrogammes. Les applications du procédé de la présente invention peuvent être aussi diverses que celles de procédés de cultures de cellules végétales en suspension dans des réacteurs classiques. Elles peuvent consister en la production de tous les compo- sants du métabolisme primaire ou secondaire de la cellule végétale par exemple, enzymes, essences, flaveurs, stéroides, pigments, alcaloïdes, flavones, hétérosides, composés nouveaux présentant des activités pharmacologiques intéressantes, etc.. Ces applications peuvent également consister en la biotrans- formation spécifique de certains substrats en des composés - précis recherchés pour des raisons diverses ou en la biodé- gradation de certains produits. Le procédé de la présente invention peut donc trouver des applications dans des secteurs industriels divers: alimen- taire,pharmaceutique,chimie purecosmétiqueetc... Les exemples suivants non limitatifs illustrent l'invention. D'une façon générale, en dehors du procédé de l'invention les techniques classiques pour l'homme de l'art sont utili- sées t stérilisation des milieux,conditions de culture, ex- traction, etc..). Exemple 1 Obtention et multiplication de cals immergés de Vinca MinorL Une de nos souches de tissus de Vinca minor L référencée Vm 1 se présente sous forme de cals cultivés sur un milieu semi- solide gélosé de composition suivante: solution de macro-éléments minéraux dite de Heller Composant Concentration en mg/l de milieu chlorure de potassium 750 nitrate de sodium 600 sulfate de magnésium heptahydraté 250 phosphate miionosodique monohydraté 125 chlorure de calcium dihydraté 75 solution d'oligo-éléments minéraux dite de Heller Composant Concentration en mg/l de milieu sulfate de zinc heptahydraté 1 acide borique 1 sulfate de manganèse tétrahydraté 0,1 sulfate de cuivre pentahydraté 0,03 chlorure d'aluminium hexahydraté 0,05 iodure de potassium 0,01 chlorure de nickel hexahydraté 0,03 source de fer chlorure ferrique hexahydraté l mg/1 de milieu solution de vitamines référencée B1 Composant Concentration en mg/l de milieu panthoténate de calcium pyridoxine acide nicotinique thiamine méso-inositol biotine 0,01 - substances de croissance acide (dichloro-2,4 phénoxy)-2 acétique lmg/l de milieu (furfurylamino)-6 purine (kinétine) lmg/l de milieu - substrat carboné: saccharose 20 g/l de milieu - agent de solidification: gélose 7 g/l de milieu Les cultures sont réalisées en tubes à essai et placées dans dans des conditions homogènes à une température de 23 C et sous un éclairement défini comme suit: spectre lumineux type lampe Sylvania Gro- lux 10. intensité lumineuse de l'ordre de 5000 lux photo période: 16h/jour cycle ae croissance: 4 semaines Dans ces conditions les cals sont relativement chlorophyl- liens et très fermes, ils présentent un taux de croissance de 225% exprimé selon la formule: PfC - PfI x 100 x 100 PfI Poids de matière fraiche Poids de matière fraiche récoltée de l'implant Poids de matière fraiche de l'implant Leur teneur en sec est de 7,11% matière sèche x 100 imatière fraiche Lors d'un repiquage de cette souche quelques cals ont été placés strictement dans les mêmes conditions alors que d'au- tres cals ont été placés dans un milieu identique à l'excep- tion de l'agar qui a été supprimé. Il s'agit donc d'un milieu liquide (10 ml/tube à essai). Douze heures environ après l'inoculation, les cals sont dé- cantés au fond du tube à essai et recouverts par environ 2,5 à 3 cm de milieu liquide. Apres plusieurs repiquages,dans ces conditions,des cals ayant présenté la meilleure croissance,on obtientune souche qui a un aspect sensiblement identique à celui de la souche culti- vée dans les conditions initiales. 6 2492404 Le taux de croissance de cette souche pour une même durée de culture est de 313%. Il est donc supérieur à celui de la souche initiale sur milieu gélosé. La teneur en matière sèche des tissus obtenus dans ces conditions est de 5,99%. Cet exemple montre qu'il est possible de cultiver des tissus végétaux, sous forme de cals décantés dans un milieu liquide, donc dans des conditions d'oxygénation limitées aux échanges de surface et, en conséquence, extrêmement réduites. Exemple 2 Culture en colonne d'une souche de Catharanthus roseus G.Don référencée CR2 - Production en batch Une de nos souches, référencée CR2, de tissus de Catharanthus roseus présente une faible capacité de biosynthèse et d'excré- tion de métabolites,mais elle a été retenue pour son activité antimitotique (PETIARD V.1980 " International Research Congress on Natural Products as medicinal agents). Elle est classiquement cultivée en boites de Petri sur un milieu semisolide ayant la composition suivante: - solution de macro-éléments dite de Murashige et Skoog Composants Concentration en mg/l de milieu nitrate d'ammonium 1650 nitrate de potassium 1900 chlorure de calcium hydraté 440 sulfate de magnésium heptahydraté 370 phosphate de potassium 170 solution d'oligo-éléments dite de Heller (voir exemple 1) - solution de vitamines référencée B1 ( voir exemple 1) - chlorure ferrique hexahydraté 1 mg/1 - substances de croissance acide naphtyl-l-acétique 1 mg/1 (furfurylamino)-6 purine I mg/1 - substrat carboné: glucose 30 g/l - agent de solidification: gélose 7 g/l La souche est entretenue par repiquage régulier toutes les 4 semaines. Des cals de cette souche âgés de 4 semaines sont placés sté- rilement dans un appareillage tel que celui de la figure 1, contenant un milieu nutritif de composition identique à l'exception de la gélose qui en a été supprimée. Cet appareillage comprend: - une colonne de culture 1 (de 3 1) comportant à sa partie inférieure un moyen de séparation des tissus et du milieu liquide, constitué par une plaque de verre fritté 2. Une tétine de verre 3 placée en haut de la colonne permet l'arrivée du milieu nutritif; une autre 4 placée en-dessous de la plaque de verre fritté permet le départ du même milieu après circulation sur les tissus et sans risque d'entraîne- ment de ces tissus. - une bonbonne de verre 5 (5 litres) pouvant être ther- mostatée et pouvant recevoir divers moyens d'aération du milieu nutritif ou de mesure de certaines de ses caractéris- tiques ( température, pH, densité d'oxygène dissous). Un moyen d'agitation 6 peut y être également ajouté afin d'as- surer un meilleur transfert d'oxygène. Une tétine de verre 7 placée à sapartie supérieure permet le retour du milieu nutritif après passage sur la colonne de culture. Une autre 8 placée à sa partie inférieure per- met le départ du milieu vers la colonne de culture. Un moyen d'équilibrage de la pression entre les deux élé- ments principaux de cet appareillage peut également être adjoint. - une pompe 9 permet la mise en circulation du milieu entre ces deux récipients. Dans l'exemple présent la pompe est placée sur le circuit de retour du milieu vers la bon- bonne 2. Le débit de circulation entre la colonne 1 et la bonbonne 2 est de 56 ml/mn. La température du milieu est maintenue à C au niveau de la partie inférieure de la colonne. Les tissus sont restés sensiblement au même niveau chloro- phyllien durant toute la durée de la culture. Après 4 mois dans ces conditions, l'ensemble biomasse et milieu a été récolté. Le poids de matière fraiche de biomasse a augmenté d'environ % ( en 4 mois) ce qui représente une croissance relative- ment faible comparativement à la même souche cultivée sur milieu gélosé (1000% en 4 semaines). La quantité d'extrait alcaloidique brut obtenu par ce procédé est d'environ 95mg: 50mg à partir de la biomasse et 45mg à partir du milieu liquide ( 5,6mg/1 x 8 1.) Cette quantité d'extrait alcaloidique a donc été obtenue en 4 mois à partir d'un inoculum équivalent à la biomasse récol- tée sur 10 boîtes de Pétri. En culture sur milieu gélosé cette même biomasse produit mg/mois ( 12mg dans les tissus et 3mg dans le milieu gélosé) soit 15x4 = 60mg sur une période de 4 mois. Globalement la production d'extrait alcaloidique brut par le présent procédé est sensiblement 1,5 fois supérieure à celle obtenue dans les conditions de référence. Il est à noter que la distribution tissus-milieu est différente dans les deux cas, et est plus favorable au milieu pour la cul- ture en milieu liquide. Qualitativement, la composition de cet extrait est sensible- ment identique à celle d'extraits obtenus classiquement. Certains composés alcaloidiques aisément repérables par chro- matographie en couche mince bi-dimensionnelle tels l'ajma- licine,la serpentine,la(-)tabersonine,etc..,y sont effective- ment présents. Exemple 3 Culture en colonne d'une souche de Catharanthus roseus G.Don référencée CR2. Production semi-continue ou continue. La même souche que celle qui est décrite dans l'exemple 2 a été cultivée dans le même type d'appareillage auquel on a 2492404 - ajouté au niveau de la bonbonne 5 un moyen de renouvellement semi-continu ou continu du milieu nutritif. Dans le tableau 1 sont indiquées les quantitées d'extrait alcaloïdique brut obtenues à partir du milieu nutri- tif lors de son renouvellement total après différentes durées de circulation sur la colonne de tissus. La comparaison avec la production à partir de culture Sur mi- lieu gélosé est faite pour une quantité de tissus équivalente, c'est-àdire pour la quantité récoltée à partir de 10 bottes de Pétri après 4 semaines de culture. Dans ces dernières condi- tions on obtient 15mg d'extrait réparti à raison de 12mg dans les tissus et 3 mg dans le milieu gélosé. Il ressort clairement de ce tableau: - que la concentration dans le milieu est identique quelle que soit la périodicité de renouvellement du milieu nutritif (de 1 à 4 semaines dans le présent exemple). - que le coefficient d'amélioration du rendement par unité de temps et de biomasse, par rapport à la culture sur milieu solide, est d'autant plus élevé que la périodicité de renou- vellement est faible. Il doit être noté que cette comparaison ne prend en compte pour le procédé décrit, que l'extrait obtenu à partir du milieu liquide. L'intérêt du procédé est encore plus marqué si l'on compare cette production non plus à l'extrait de l'ensemble tissus + milieu des cultures sur milieu solide mais seulement à l'ex- trait du milieu gélosé. Pour cette souche la présence d'alcaloïdes dans le milieu sem- ble donc due à un équilibre de diffusion. Dans ces conditions, le renouvellement total du milieu nutritif permet de ramener à O sa concentration en extrait alcaloldique brut, et en consé- quence d'amplifier le phénomène de diffusion des alcaloïdes de la biomasse vers le milieu. L'augmentation du volume de milieu en circulation sur une même quantité de biomasse ou le déplacement permanent de l'équilibre de concentration tissus-milieu sont des moyens qui permettent d'encore mieux exploiter ce phénomène de diffusion. L'exemple 4 décrit un ce des procédés. TABLEAU 1 Périodicité de Concentration en EC total obtenu Production d'EC Production d'EC Rapport de produc- Rapport de produc Renouvellement EC dans le milieu dans le milieu par semaine pour 4 semaines tion ML/MS tion ML/MS (pour 8 1.) (milieu)/(tissus+ (milieu seul) ___________________ milieu) 1 semaine 2,95 mg/l 24 mg 24 mg 96 mg 96 v 6,5 96 32 3 2 semaines 3,10 mg/l 24,8 mg 14,4 mg 57,6 mg 57,6/4 57,6/ -19 3 3 semaines 3,20 mg/l 25,6 mg 8,5 mg 34 mg 34/ -J2,3 34 -' il /3 4 semaines 3,80 mg/l 30,4 mg 7,5 mg 30 mg 30 2 30 l1 o ML = milieu liquide (en colonne) MS = milieu solide (en boites de) EC = Extrait brut (Pétri) PRODUCTION EN MILIEU SOLIDE POUR UNE MEME QUANTITE DE BIOMASSE RECOLTEE APRES 4 SEMAINES DE CULTURE: 15 mg dont 12 mg dans les tissus et 3mg dans le milieu. %0 rla ou 4... 2492404 4 il Exemple 4 Culture en colonne d'une souche de Catharanthus roseus G.Don référencée CR2 - Extraction semi-continue ou continue des métabolites excrétés dans le milieu. Le même souche que celle qui est décrite dans les exemples 2 et 3 a été cultivées dans le même type d'appareillage auquel on a ajouté un moyen d'extraction continue des alcaloïdes contenus dans le milieu. Ce moyen consiste en une colonne d'extraction remplie soit d'un solvant organique non miscible à l'eau (chloroforme, chlorure de méthylène, etc..) soit de résines permettant spé- cifiquement la fixation d'alcaloïdes ( Cette colonne d'extraction peut être placée soit directement sur le circuit de circulation du milieu soit en parallèle à la bonbonne 5. Elle peut donc être utilisée soit de façon continue soit sporadi- quement (une fois par jour par exemple). Par ce procédé et pour les mêmes raisons que celles qui sont exposées dans l'exemple 3 le niveau de production dans le milieu liquide par unité de temps et de biomasse est fortement augmenté: Il est multiplié par 10 ou par 40 selon que la comparaison prend ou non en compte l'extrait des tissus récoltés sur mi- lieu gélosé. Contrairement au procédé décrit dans l'exemple 3 cette augmentation est obtenue sans renouvellement du milieu nutritif et donc, sans perte inutile des produits qui le com- posent. Ceci est plus particulièrement important pour le subs- trat carboné dont la demande est relativement peu élevée compte tenu des faibles taux de croissance de la biomasse cultivée dans ces conditions. Exemple 5 Culture en colonne d'une souche de Catharanthus roseus G.Don référencée CR20. Production en batch, semi-continue,continue ou avec extraction continue. Une autre de nos souches de Catharanthus roseus référencée CR20 est cultivée en suspension dans un milieu liquide agité. La composition de ce milieu nutritif est la suivante: - solution de macroéléments minéraux 2492404 i Composants nitrate de potassium sulfate d'ammonium phosphate monosodique monohydraté sulfate de magnésium heptahydraté chlorure de calcium dihydraté Concentration en mg/1 de milieu - solution d'oligo-éléments minéraux Concentration en mg/1 de milieu sulfate de manganèse monohydraté acide borique sulfate de zinc heptahydraté molybdate de sodium dihydraté sulfate cuivrique pentahydraté chlorure de cobalt hexahydraté iodure de potassium 0,250 0,0250 0,0250 0,750 - solution de vitamines Concentration en mg/1 de milieu mésoinositol acide nicotinique thiamine pyridoxine - source de fer acide éthylène -diamino-tétra-acétique dihydraté sulfate ferreux heptahydraté substancesde croissance acide (dichloro-2,4-phénoxy)-2 acétique (furfurylamino)-6 purine (kinétine) _ substrat carboné: saccharose 37,3 mg/l 27,8 mg/1 lmg/1 de milieu 0,06 mg/l " g/1 de milieu Cette souche CR20 est cultivée en suspension dans des fioles d'Erlenmeyer agitées à une vitesse de 100-120 rotations par minute et à une température de 26 C. Elle est entretenue par repiquage régulier tous les 14 jours dans du milieu nutritif neuf. Elle atteint dans ces condi- 2492404.! tions une densité maximale de 1,5 x 10 cellules/ml. Elle se présente sous forme d'agrégats cellulaires très fins per- mettant un repiquage par simple prise d'une fraction ali- quote. Dans le présent exemple cette souche est cultivée en deux phases successives. - dans une première phase elle est cultivée à 300C dans un bioréacteur classique de 4,5 1 utiles en milieu liquide agité et aéré. Dans ces conditions, elle atteint un maxi- mum de densité d'environ 250 g de matière fraiche par litre de culture. Il s'agit donc d'une première phase de multi- plication de la biomasse. - dans une deuxième phase la biomasse ainsi obtenue est pla- cée dans un appareillage identique à celui décrit dans l'exemple 2 et représenté dans la figure 1. Très rapidement l'ensemble de la biomasse décante sur la plaque de verre fritté de la colonne 1. La température de culture est maintenue à 30aC au bas de la colonne et le débit de circulation du milieu est également de 56 ml/mn. Une aéra- tion de 0,1 V.V.M.(vol/vol/mm)est maintenue dans la bonbonne 5. Les tissus conservent une coloration blanc jaunâtre, aucun phénomène de brunissement caractéristique d'une nécrose n'ap- parait durant toute la durée de la culture. Après 4 mois de culture dans ces conditions, l'ensemble tissus et milieu est récolté.Le taux de croissance est de 100% environ. Il y a donc eu une faible croissance que l'on avait d'ailleurs observée par une augmentation du niveau de la bio- masse dans la colonne 1. La quantité d'extrait alcaloldique brut obtenu dans ces conditions est,pour une quantité de tissus équivalente,environ 2 fois supérieure à celle qui a été obte- nue à partir de cultures en milieu liquide agité (en fiole d'Erlenmeyer ou en réacteur) durant la même période. Qualita- tivement,ces extraits sont tout-à-fait similaires à ceux prove- nant de cultures réalisées classiquement. On peut entre autres composés y noter la présence d'ajmalicine et de serpentine. Les diverses améliorations du procédé décrites dans les exemples 3 et 4 pour la souche CR2 ont également été mis en oeuvre sur la souche C20. Ils ont augmenté d'environ 5 fois le rendement par unité de temps. Des cultures de cellules végétales en milieu liquide non agité peuvent donc être réalisées également à partir de sus- pensions cellulaires développées dans des bioréacteurs clas- siques. Exemple 6 Culture en colonne d'une souche de Papaver somniferum référencée PS 167. Une de nos souches de Papaver somniferum référencée PS 167 est cultivée en tubes à essai sur un milieu semi-solide ayant la composition suivante solution de macro-éléments minéraux dite de Heller (voir exemple 1) solution d'oligo-éléments minéraux dite de Heller (voir exemple 1) chlorure ferrique hexahydraté lmg/l de milieu - solution de vitamines référencée B1 (voir exemple 1) - substances de croissance acide (dichloro2,4 phénoxy)-2 O,lmg/1 da milieu acétique (furfurylamino)-6 purine (kinétine) 1 mg/i de milieu - substrat carboné: glucose 30 g/l de milieu agent de solidification: gélose 7 g/l de milieu Les cultures sont placées dans les mêmes conditions que celles décrites pour la souche de Vinca minor dans l'exemple 1. * Les cals sont friables et relativement chlorophylliens. Cette souche a été retenue pour ses capacités de biosynthèse de certains alcaloïdes du pavot en dehors de tout phénomène de différenciation morphogène. Avec des cultures de ce type âgées de 5 semaines on inocule un appareillage tel que décrit dans l'exemple 2 et contenant un milieu liquide de composition identique à celle indiquée ci-dessus à l'exception de la gélose qui en a été supprimée. Morphologiquement,la culture conserve son aspect et ne montre pas de phénomènes de nécrose. Le débit de circulation du milieu sur la colonne 1 est de 56 ml/mn. Après 3 mois de culture dans ces conditions, la biomasse et le milieu sont récoltés et extraits classiquement. Le poids de matière fraiche récoltée est augmenté de 200% par rapport à celui de l'implant. De même que dans les exemples précédents le rendement en extrait brut alcaloidique de la biomasse et du milieu est légèrement supérieur à celui observé pour les cultures en conditions classiques c'est-à-dire sur milieu gélosé en tubes à essai. Dans cet exemple également,llaugmentation de rendement est principalement due à la présence dans le milieu liquide en circulation sur les tissus de plus de 50% de l'extrait pro- duit. La mise en oeuvre des améliorations du procédé décri- tesdans les exemples 3 et 4 ( renouvellement du milieu, ex- traction continue) accentue l'intérêt des cultures en mi- lieu liquide non agité par rapport aux cultures sur milieu gélosé. Exemple 7 Culture en colonne d'une souche de Medicago sativa référen- cée Ms CK2. Une de nos souches de Medicago sztiva référencée Ms CK2 est cultivée sous forme d'une suspension cellulaire en fiole d'Erlenmeyer agitée. Elle est cultivée à 270C à l'obscurité et présente la parti- cularité d'utiliser du lactose comme seule source de subs- trat carboné. Il a pu être montré au cours d'études en fer- menteur que cette possibilité d'utilisation du lactose était due à deux activités p-galactosidasiques, une localisée dans les cellules et une localisée sur la paroi et dans le milieu nutritif. Le milieu nutritif pour cette souche a la composition sui- vante: - solution de micro-éléments minéraux dite de Zlurashige et Skoog (voir exemple 2) - solution de micro-éléments minéraux dite de Heller (voir exemple 1) - source de fer: voir exemple 5 - solution de vitamines référencée B1 (voir exemple 1) - substance de croissance 10. acide naphtyl-1-acétique lmg/l de milieu (furfurylamino)-6 purine lmg/l de milieu - substrat carboné: lactose 30g/l de milieu Dans le présent exemple cette souche est cultivée en 2 phases successives: -dans une première phase elle est cultivée à 270C dans un fermenteur de 3,5 litres utiles avec une agitation à pales de 80 R.P.M. (rotations par mn). La tension d'oxy- gène dissous du milieu est maintenue supérieure à 1,5 ppm. Pour cela le niveau d'aération est modulé de 0,03 V.V.M à 0,5 V.V.M. Dans ces conditions, la culture atteint en 250 heures une densité de 300g de matière fraicbe par litre. - dans une deuxième phase la biomasse ainsi obte- nue est transférée dans la colonne 1 de l'appareillage décrit dans l'exemple 2,contenant le même milieu nutritif. Dans ces conditions les tissus-décantent rapidement. La tem- pérature est maintenue à 270C en bas de la colonne 1 et le débit de circulation du milieu est fixé à 100 ml/minute. Une aération de 0,25 V.V.M. est maintenue dans la bonbonne 5. L'aspect morphologique de la culture reste identique pendant plus de 3 mois. Il a pu également être montré que, dans ces conditions, la culture conservait sa capacité d'hydrolyse du lactose (chute de la concentration en lactose du mi- lieu et augmentation des concentrations en glucose et galac- tose) et que le milieu nutritif présentait une activité P-galactosidasique (activité O.N.PG,). Cet exemple montre que le procédé de la présente invention est également un moyen efficace de transformation enzymati- que de certains substrats. Des exemples non limitatifs décrits ci-dessus il ressort clairement que le procédé de la présente invention permet de cultiver in vitro durant de longues périodes des cellules végétales en milieu liquide non agité et en l'absence de tout support artificiel d'inclusion ou de fixation de ces cellu- les et d'exploiter dans ces conditions certaines potentiali-tés de leur métabolisme. Le procédé de la présente invention permet - de maintenir des cultures en phase de production de certains métabolites durant des périodes très longues dépassant 4 à 6 mois. - de faciliter fortement la production lorsqu'elle est, dans les conditions classiques> totalement déphasée par rapport à la croissance,car il permet aisément de freiner ou d'inhiber la crois- sance. - d'exploiter au mieux les phénomrnes de diffusion vers le milieu nutritif et de ce fait, d'augmenter largement la production par unité de biomasse et par unité de temps. - de réaliser une extraction continue des produits biosynthétisés et ainsi d'améliorer le rendement de production par rapport au substrat nutritif utilisé. - d'exploiter des souches dont l'adaptation à une culture en milieu liquide agité, se révèle impossi- ble ou difficile, ou encore dont la capacité de pro- duction n'est exprimée qu'en présence de différen- ciations morphologiques apparaissant uniquement au niveau des cals. Par sa simplicité le procédé de la présente invention pré- sente également de nombreux autres avantages par rapport aux procédés classiques de culture en milieu liquide agité: il limite les risques de contamination, les coûts d'utilisation: (énergie,quantité de milieu consommée) et les coûts d'amor- tissement (simplicité du matériel). Pour ces différentes raisons le procédé de la présente inven- tion est donc susceptible d'être utilisé dans de nombreuses applications pour la production ou la biotransformation de substances naturelles d'origine végétale et cela de façon compétitive avec l'extraction de la plante entière ou la synthèse organique. Revendications 1. Procédé de production ou de biotransformation de métabo- lites par des cellules végétales in vitro, procédé carac- térisé par le fait que les cellules sont cultivées en milieu liquide non agité et en l'absence de tout support artificiel d'inclusion ou de fixation de ces cellules. 2. Procédé selon la revendication 1, caractérisé par le fait que l'on utilise comme inoculum des cals de cellules végétale 3. Procédé selon la revendication 1, caractérisé par le fait que l'on utilise comme inoculum des suspensions cellulaires cultivées en fermenteur. 4. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisé par le fait que l'on renouvelle en semi-continu ou en continu le milieu nutritif utilisé. 5. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 4 caractérisé par le fait que l'on extrait en continu les métabolites produits. 6. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 5, caractérisé par le fait qu'on limite partiellement ou to- talement la croissance de la biomasse par suppression d'un élément du milieu nutritif. 7. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 6, caractérisé par le fait qu'il est utilisé pour la culture de tissus ou de cellules de végétaux appartenant à l'em- branchement des phanérogammes.