FR 2481289 A1 19811030 FR 8107535 A 19810415 1. La présente invention concerne un nouveau composé à base de platine, son procédé de préparation et son ap- plication thérapeutique dans le traitement des tumeurs malignes. L'inhibition de la division cellulaire et l'ac- tivité antitumorale des complexes de coordination du pla- tine, en particulier du cis-dichlorodiamine platine (II) ou PDD, de formule H3N / Cl Pt (III) H3N Cl fut découverte il y a une quinzaine d'années. Depuis lors, de nombreuses recherches ont porté sur cette nou- velle classe de composés en espérant: 1 - identifier les plus actifs d'entre eux, 2 - réduire les inconvénients qui ont été mis à jour rapidement (en particulier leur faible hydrosolubi- lité qui rend l'administration difficile, la néphrotoxi- cité et l'ototoxicité), et 3 - élucider leur mécanisme d'action. Des études récentes ont proposé divers change- ments dans la molécule. Par exemple, le remplacement des deux atomes de chlore du PDD par des ligands bidentates, tels que les groupements oxalato et malonato, a été pro- posé en 1973. En 1974, il a été suggéré de remplacer les deux molécules de NH3 du PDD par le 1,2-diaminocyclo- hexane (DAC), par exemple dans le cis-dichloro (1,2- diaminocyclohexane) platine (II), dénommé ci-après par abréviation PHD. Le complexe obtenu présentait l'avan- tage de ne pas offrir de résistance croisée avec le PDD chez l'animal. Deux autres complexes de platine, à savoir le cis-sulfato monoaquo (1,2diaminocyclohexane) platine (II), dénommé ci-après PHS, et le cis-malonato (1,2- 2. diaminocyclohexane) platine (II), dénommé ci-après par abréviation PHM, sont également déjà connus. Cependant, ces recherches n'ont pas été poursui- vies à cause de la faible hydrosolubilité de ces composés et/ou de lèur toxicité, en particulier leur toxicité rénale. Des recherches conduites par l'auteur de la pré- sente invention se sont orientées vers des ligands pos- sédant un troisième groupement carboxylate afin d'amélio- rer l'hydrosolubilité du complexe. Ces ligands sont le citrate de sodium et le trans-aconitate de sodium. L'au- teur de la présente demande a aussi synthétisé les dif- férents complexes correspondants, à la fois au cis-diamino platine (II) et au cis (1,2-diaminocyclohexane) platine (II), en particulier le ciscitratodiamine platine (II), dénommé ci-après PAC, le cis-citrato (1,2-diaminocyclo- hexane) platine (II), dénommé ci-après PHC et le cis- (t-aconitato) (1,2-diaminocyclohexane) platine (II), dénommé ci-après PHTA. Il a pu notamment observer que le complexe citraté possédait une hydrosolubilité supérieure au PDD, mais que ces composés ne sont pas satisfaisants tant en ce qui concerne leur toxicité que leurs propriétés thérapeutiques, ainsi que cela sera mis en évidence ci- après par rapport au composé selon la présente invention. L'auteur de la présente invention a également préparé les complexes obtenus à l'aide du ligand isoci- trato, à savoir le cis-isocitrato diamine platine (II), dénommé ci-après PAIC et le cis-isocitrato (1,2-diamino- cyclohexane) platine (II), dénommé ci-après PHIC. La présente invention repose sur la découverte surprenante que le complexe obtenu à partir du ligand isocitrate de sodium pour l'entité cis (1,2-diaminocyclo- hexane) platine (II) présente à la fois une toxicité réduite et des propriétés antitumorales améliorées. Le nouveau composé selon l'invention est le cis- isocitrato (l,2-diaminocyclohexane) platine (II). Ce 3. composé résulte de l'interaction entre une entité molé- culaire dans laquelle l'atome de platine est déjà partiel- lement chélaté avec le 1,2-diaminocyclohexane (isomère trans-d, trans-1 et trans-dl), représenté ci-dessous NH 2\ U AH //\Pt (I) et l'isocitrate trisodique (isomères d; 1; dl) corres- pondant à la formule 0 C,xONa H_ C i __CO i -0 H -C -C O (II) 1 ', ONa.J CH2 12- sC NaO / >O qui agit comme ligand labile. Deux liaisons peuvent se former entre l'entité moléculaire (I) et chacune des posi- tions réactives 1, 2, 3 et 4 du ligand (II). La chélation a certainement lieu entre les positions 1 et 2 et les positions 1 et 3. Une interaction entre les positions 1-4, 3-4, 2-3 et 2-4 est aussi possible. Une fixation monodentate entre (I) et (II) est très probable: la pre- mière liaison étant une liaison Pt-carboxylate et la seconde liaison étant une liaison Pt-OH. Ainsi, l'inven- tion se rapporte à chaque complexe possible ainsi qu'au mélange de ces complexes en toutes proportions. Le composé de l'invention, c'est-à-dire le PHIC, peut être préparé en solution aqueuse à partir du PHD de formule (IV) suivante: 4. 2Pt/e --NH2, , Pt ci Cl(IV) 2 Cl par réaction avec l'isocitrate trisodique. Selon une variante du procédé précédent, afin d'isoler sous forme solide le PHIC du milieu réactionnel, on opère d'après le schéma réactionnel suivant: Dans une première étape, le dérivé diaquo est préparé d'après la réaction: cis-Pt(DAC) C12+2AgN03-* cis-/Pt(DAC)(H201 2- (NO3) 2+2AgCl Dans une seconde étape, l'ion isocitrate est complexé suivant la réaction: cis-/Pt (DAC) (H20) 2_7 (NO3)92+ isocitrate-> PHIC.3H20+NaNO3+ HNO3 -2 2 32trisodique 2H20 Préparation du dérivé diaquo - 5 g de cis- Pt(DAC)C12 sont mis en suspension dans 250 ml d'H20 bidistillée et on ajoute 4,3 g d'AgNO3 solide. La réaction s'effectue à l'abir de la lumière, pendant 4 heures à 50-55 C. Il se forme un précipité blanc d'AgCl. Le tout est mis à 0-4 C pendant quelques heures, puis filtré sur papier Whatman (Whatman est la marque commer- ciale de la Compagnie Whatman Inc., New Jersey, U.S.A.). Le précipité est lavé avec de l'eau (50-75 ml) et le fil- trat (300-350 ml) incolore est passé sur filtre Millipore (0,45 micron) (Millipore est la marque commerciale de la Société Millipore, Massachussetts, U.S.A.). Préparation du PHIC On ajoute 3,85 g d'isocitrate trisodique, 2H20 et on porte le mélange à 60-65 C pendant 20 heures à l'a- bri de la lumière. La solution colorée en jaune (qui sera filtrée sur papier Whatman si nécessaire) est alors con- centrée au rotavapor (température du bain = 50 C) jusqu'à 25-30 ml. 5. Le complexe est filtré sur Millipore (0,45 mi- cron) et ajouté à l'aide d'une pipette (en agitant conti- nuellement) à un mélange froid éthanol/acétone, 1/1, 1000 ml. L'ensemble est laissé à 4 C pendant 2 heures, puis filtré sur fritté, lavé à l'acétone (100 ml), puis à l'éther (100 ml). Le complexe de couleur blanc cassé est séché sous vide, puis pesé. On recueille environ 6,5 g de PHIC à par- tir de 5 g de cis-Pt(DAC)C12, correspondant à un rende- ment de 85 %. Le PHIC ainsi obtenu sous forme de poudre blanc cassé, commence à noircir lorsquvon le chauffe à 245 C et se décompose complètement à 254 C. Les analyses élémen- taires du PHIC sont reportées ci-dessous (le platine a été dosé par spectrophotométrie d'absorptionoatomique). C H N Pt Cl Na PHIC.3H20 calculé 24,26 4,10 4,72 32,84 - 7,16 P.M. = 594, 10 trouvé 24,10 3,96 4,76 32,10 - 6,99 Ces résultats analytiques sont aussi en accord avec la formule PHIC.2H20 dans laquelle l'entité Pt(DAC) ne forme pas deux liaisons avec l'ion isocitrate mais serait liée à un groupement carboxylate, certainement celui en position 1, l'autre liaison étant une liaison Pt-OH. Ce composé possède une solubilité presque infinie dans l'eau (supérieure à 1500 mg/ml). Dans une solution de chlorure de sodium 9?/o,,cette solubilité est environ de 700 mg/ml; dans ce milieu le complexe évolue en 24 heures pour donner un précipité jaune correspondant au dérivé chloré. On peut identifier le PHIC à l'aide de ses chromatogrammes et par l'analyse des spectres U.V., I.R. et 13C représentés sur les figures annexées. La Fig. 1 illustre des chromatogrammes liquide haute pression du PHIC qui ont été obtenus dans les conditions suivantes: 6. La Fig. 2 représente le spectre U.V. du PHIC enregistré sur un spectrophotomètre CARY 14, à une concen- tration de 3 mg pour 100 ml d'eau. Le coefficient d'abso;- ption moléculaire est de 9400 l.mol1. cm1. La Fig. 3 représente le spectre I.R. du PHIC en- registré sur un spectrophotomètre PERKIN ELMER 577. Le composé solide a été dilué à 1 % dans du bromure de potas- sium puis comprimé sous forme de pastille. Les deux pics -1 - standard correspondent à vl= 2850,7 cm- et V 906,7 cm1 13 2 La Fig. 4 est un spectre en 13C du PHIC obtenu d'après les conditions expérimentales suivantes: RéfCé- oncentration vinoume Sensi- Eluant Réféinjecte _ _ _ _ __ _ _ _ _ _ rences solvant bilité Débit Pression (41) (ml/mn) (MPa) A 0,5 mg/ml 25 0,02 H20 HO2 1,5 10,5 H2 0 B x 0,5 mg/ml 15 0,04 C2H5OH/H20(4/6) C2H50H/H20 2 2,1 (4/6) C 0,5 mg/ml 50 0,01 1 % acide acétique 1 % acide 4 2,1 acétique D 0, 5 mg/ml 50 0,01 1% acide acétique 1 %-acide 2 2,1 acétique x colonne C18 reverse radiale. x colonne C18 reverse radiale. 7. Les spectres de résonance de 13C, avec découplage des protons, ont été obtenus à l'aide d'un spectromètre BRUKER WH90 travaillant à 22,62 MHz en mode pulsé et avec transformée de Fourrier. Le nombre de signaux de libre précession qui ont été accumulés dans un domaine de 6 KHz en utilisant 8 Kmots de mémoire était de 17000 pour le PHIC. Une impulsion voisine de 90 pendant 12gs a été utilisée avec des temps de répétition de 3 s. Les déplacements chimiques SCi sont exprimés en ppm et sont rapportés au TMS. Le PHIC a été dissous dans D20 à la concentration de 1,1 g/ml. La solution a été filtrée sur filtre Millipore (0,45 micron) avant l'en- registrement du spectre. C6D6 a été utilisé comme étalon externe. Les déplacements chimiques sont donnés dans le tableau ci-dessous. DEPLACEMENTS CHIMIQUES S13C(ppm/TMS) du PHIC N du Attribution pic Ci ligand Ci 1 184,2 2 183,9 3 183,8 4 182,9 182,7 6 182,4 7 182,3 lSOx C-1,2,3 8 182,2 9 182,0 181,9 ,9 ,2 1Sa C-4 8. DEPLACEMENTS CHIMIQUES S13C (ppm/TMS) du PHIC Tableau (suite) sCi 64,8 64,0 51,1 ,6 ,3 48,9 39,6 39,1 38,4 36,4 34,3 34,1 33,4 32,8 26,3 Attribution ligand DAC xx 1l0 1SO DAC DAC isocitrate de formule H ÀV4 1C4 1 C) [ O-Na 1 2 0 H-C5-- Cv H-|- ^^O-Na^ H C 2---C 6 - 12 C-C %%s 0-N'a+ Ci C-l,i' N du pic XlSO = C-5 C-6 C-2,2' C-3,3' 9. XxDAC = 1,2-diaminocyclohexane de formule 3/ \i C CH-N., é21 | H-E1 H2C CH-NH, 2H Les résultats des études pharmacologiques et toxicologiques rapportés ci-après mettent en évidence les propriétés du complexe PHIC selon l'invention. Ces études ont été menées sous forme comparative vis-à-vis de composés connus et mentionnés précédemment et ont permis de démontrer que le composé selon l'invention présente les avantages suivants: 1 - une hydrosolubilité presque infinie qui est au moins plusieurs centaines de fois supérieure à celle d'autres complexes de platine similaires; 2 - une très faible toxicité chez la souris et le babouin; 3 - une activité antitumorale élevée envers la leucémie L1210 et le sarcome 180. Ces études comparatives furent entreprises avec les composés qui sont identifiés par des abréviations à des fins de simplification de l'exposé. ETUDE PHARMACOLOGIQUE Les propriétés antitumorales du PHIC ont été évaluées au cours d'études comparatives en utilisant une méthodologie classique sur deux types de tumeurs expérimentales chez la souris, la leucémie L1210 et le sarcome 180. Les conditions dans lesquelles chaque expérimentation a été conduite ainsi que les résultats sont reportés ci-dessous. 248128ó - 10 - I - Leucémie L1210: Ascite et solide - souris DBA/2 fmanelles (CNRS, Orleans) de 20 à 22 g, - 10 souris par dose a) greffe des cellules par voie i.p., traitement par voie i.p. 105 cellules sont greffées i.p. au jour Jo et le traitnement i.p. s'effectue 24 heures après (jour JJ) en une seule injection. b) greffe des cellules par voie i.p., traitement par voie i.v. b cellules sont greffées i.p. au jour Jo et le traitement i.v. (au niveau de la queue) s'effectue 24 heures après (jour J1) en une seule injection. c) greffe des cellules par voie s.c., traitement par voie i.p. 106 cellules sont greffées sous la peau derrière la tête de l'animal au jour J et le traitement i.p. s'effectue en une seule injection, soit au jour J1' soit au jour J4. II - Sarcome 180: Ascite - souris Swiss femelles (Evic-Ceba, Bordeaux) de 20 à 22 g, - 10 souris par dose, - 106 cellules greffées i.p. au jour Jo traitement i.p. 24 heures après (jour J1) en une seule injection. Les composés de comparaison PDD, PAC, PAIC, PHC et PHTA ainsi que le composé de l'invention PHIC ont été dissous dans une solution de NaCl 90/o. PHD et PHM, qui sont également des composés de comparaison, ont été mis en suspension dans une solution de Klucel (hydroxy propyl cellulose) à 4%/0o (Klucel est une marque com- merciale de la compagnie Hercules Inc., Delaware,U.S.A.). Le PHS a été dissous dans l'eau car sa dissolution dans le NaCl 4%/o entraîne la formation presque immédiate du composé chloré (très certainement monochloré, puis dichloré: PHD) jauneinsoluble. Les solutions de ces composés ont été DrDéparées extemporanément. Les À i.p. = voie rintrapéritonéale; i.v. = voie intraveineuse; s.c. = voie sous-cutanee. 2481289 - -- 11. augmentations du temps de vie des animaux traités (ILS) ont été calculées à partir du temps moyen de vie des animaux témoins en utilisant la formule: survie des animaux traités - survie des animaux témoins ILS = x 100 survie des animaux témoins ILS = Increase Life Span = augmentation du temps de vie en %. Les expériences ont été arrêtées 30 jours après la greffe de la tumeur dans le cas de la leucémie L1210 et 60 jours après la greffe de la tumeur dans le cas du sarcome 180. Les animaux survivants aux échéances précisées ci-dessus ont été inclus dans le calcul de l'ILS. Les composés PAC, PAIC et PHTA ont donné 17 % (100 mg/kg), 74 % (75 mg/kg) et 13 % (500 mg/kg) d'ILS sur la L1210 (105 cellules, greffe i.p. au Jo, traitement en une seule injection au J1). A cause de leur inactivité (PAC et PHTA) ou de leur plus faible activité (PAIC) sur la L1210 que celle du PHIC, ces composés n'ont pas été étudiés plus en détail. Il est important de remarquer: a) que le PHIC donne la meilleure activité antitumorale sur la L1210 et sur le S180, greffe i.p. traitement i.p. (tableaux I et II). - b) que le PHIC est actif sur la L1210, lorsque la greffe est i.p. et le traitement i.v. (ta- bleau III). c) l'index thérapeutique du PHIC, défini par le rapport I.T. = DL50/DME (DME = dose minimale efficace, c'est-à-dire la dose correspondant à 25 % d'ILS pçur les deux tumeurs expérimentales étudiées) est 5,5 fois supérieur à celui du PDD dans le cas de la leucé- mie L1210 et 4,0 fois supérieur à celui du PDD dans le cas du sarcome 180. 12. TABLEAU I COMPARAISON DE L'ACTIVITE ANTITUMORALE DU PDD ET DU PHIC SUR LA LEUCEMIE L1210 ET SUR LE SARCOME 180 L1210 S 180b Dose animaux animaux mg/kg ILS survivants ILS survivants à 30 jours à 60 jours (%) (%) (%) (%) PDD 2 28 O - - 4 52 O 41 0 Compa- raison 6 75 O - - 8 106 O 65 O PHIC 5 16 O - - 40 O -29 O Selon 25- 59 O 46 O l'inven- tion 50 79 O 112 20 c 129 20 171 40 a Greffe i.p. (105 cellules) au jour Jo et traitement i.p. au jour J1,' 10 souris par dose Temps moyen de survie des animaux contrôlés: PDD = 9,3- 0,8 jours; PHIC = 8,6 - 0,4 jours b Greffe i.p. (106 cellules) au jour Jo et traitement i.p. au jour J1' 10 souris par dose Temps moyen de survie des animaux contrôlés: PPD = 17,1 2,0 jours; PHIC = 18,7 - 1,3 jours c une souris morte de toxicité, exclue du calcul de l'ILS. 13. Tableau II - COMPARAISON DE L'ACTIVITE ANTITUMORALE DE QUELQUES DERIVES Pt(DAC) SUR LA LEUCEMIE L1210 ET SUR LE SARCOME 180. L1210 ILS(%) Animaux survivants à 30 jours (%) S 180 _ ILS(%) Animaux survivants à 60 jours (%) PHD 1 45 2 49 4 65 PHM o0 o o0 - PHS 0,5 - - 4 0 1 - - 10 0 2 - - 25 0 4 - - 47 0 112 40 112 10 PHC 10 - - 20 0 - - 124 20 - - 121 30 -- - - 90 0 - - d sur 5 souris seulnement Greffe i.p. (105 cellules pour la L1210 et 10 cellules pour le S180) au jour J0 et traitement i.p. au jour J1, souris par dose. Canposés de cmana- raison Dose (mg/ kg) 14. TABLEAU III- ACTIVITE ANTITUMORALE DU PHIC SUR LA LEUCEMIE L1210 GREFFE S.C. - TRAITEMENT I.P. GREFFE I.P. - TRAITEMENT I.V. - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - - Greffe sous-cutanée (106 cellules) Traitement.i.p. au Jl ILS (%) 62,5 mg/kg 26 Traitement i.p. au J4 62,5 mg/kg 17 mg/kg 50 temps moyen de survie des animaux contrôles = 8,6 + 0,5 jours _________________________________________________________ Greffe intrapéritonéale (105 cellules) Traitement i.v. au J1 ILS (%) mg/kg 25 mg/kg 41 temps moyen de survie des animaux contrôles = 8,8 + 0,7 jours _________________________________________________________ ETUDE DE LA TOXICITE Des études comparatives ont été entreprises afin d'évaluer les toxicités in vitro et in vivo du composé de la présente invention, le PHIC. Les résultats de ces études sont rapportés ci-dessous. A - CELLULES L1210 EN CULTURE On apprécie la toxicité in vitro sur des cellules 15. L1210 en culture en déterminant la dose inhibitrice 50 (DI50) qui est la concentration du composé de platine qui réduit de 50% la vitesse de croissance des cellules après une exposition de longue durée à la drogue. Cette expo- sition est habituellement de 24 à 48 heures. A la DI50 toutes les cellules sont viables (exclusion au bleu de trypan). La partie expérimentale de ce travail est décrite dans un article récemment publié (P. LECOINTE, J.P. MACQUET et J.L. BUTOUR (1979) Biochem. Biophys. Res. Commun., 90, 209-213). Les résultats sont inclus dans le tableau IV. TABLEAU IV - CYTOTOXICITE DES DIFFERENTS COMPOSES SUR LES CELLULES L1210 EN CULTURE Composés de Platine DI50 (/M) PDD 2,33 *comparaison PHD 0,13 PHS 0,19 PHM 0,39 Selon l'invention PHIC 0,42 B- TOXICITE CHEZ LA SOURIS 1. TOXICITE i.p., i.v. et v.o. L'étude toxicologique aiguë (une seule injection de composé) a été conduite sur des souris Swiss d voie orale 16. femelles (Evic-Ceba, Bordeaux) de 21 à 23 g et des rats. animaux ont été traités pour chaque dose de composé. La toxicité des différents composés est donnée dans le tableau V. TABLEAU V - TOXICITE AIGUE DES DIFFERENTS COMPOSES CHEZ LA SOURIS Composés PDD PAC PAIC PHD PHC PHIC PHTA DLo0 9 125 75 7 150 135 > 500 (mg/kg) (DL10)ft 6 DL0 = dose maximale non mortelle,DL10= dose qui tue % des animaux. do voie orale. Les toxicités intrapéritonéale (i.p.) a intraveineuse (i.v.)a et par voie orale (v.o.)a du PHIC sont reportées dans le tableau VI. La perte de poids au 4ème jour, des animaux traités i.p.. à la DL10 est de 3,5 g et de 4,3 g à la DL50. _______________________________________________-___________ alO animaux par dose. 17. TABLEAU VI - Toxicités intrapéritonéale (I.P.), intraveineuse (I.V.) et par voie orale (V.*O.) du PHIC chez la souris et le rat. x Limites de confiance pour P = 0,05 DL10 = dose qui tue 10% des animaux, DL50 = dose qui animaux, DL90 = dose qui tue 90% des animaux. 2. TOXICITE RENALE ET HEPATIQUE tue 50% des La néphrotoxicité du PDD est bien connue. Il était alors intéressant de comparer les effets causés au niveau des reins et du foie, qui sont les organes chez lesquels le platine s'accumule le plus, par le composé animal voie DL 10 DL 50 DL 90 mg/Kg mg/Kg mg/Kg I.P. 135 236 365 (220-254)x souris I.V. 348 421 489 (411-431) x supérieure V.o. à 1 000 I.P. 61 143 278 (134-153)x rat I.V. 111 173 244 (156-192)x supérieure V.O. à 1 000 18. de la présente invention et par les composés déjà connus cités précédemment. On a utilisé des souris Swiss femelles (Evic- Ceba, Bordeaux) de 20 à 22 g. Les souris ont été traitées par voie intrapéritonéale au jour Jo, puis sacrifiées aux jours Jl' J4 et J10' 9 souris ont été utilisées par composé et les doses administrées sont reportées dans le tableau VII. TABLEAU VII - DOSES UTILISEES POUR L'ETUDE DE LA TOXICITE RENALE ET HEPATIQUE. COMPOSE PDD PAC PHD PHM PHS PHC PHIC Dose 8 100 4 50 5 120 150 (xig/g) solution solution solution SOLVANT aqueuse aqueuse H H aqueuse H20 20 aqueuse de NaCl de Klucel de NaC1 9o/o 40/1o 9o/ Il faut mentionner que ces doses correspondent à des doses maximales non toxiques chez la souris saine (voisines ou égales à la DL0). Le contrôle des parenchymes rénaux et hépatiques fut réalisé sur des organes fixés au Duboscq-Brasil et inclus dans la paraffine. Les coupes de 5 microns d'épaisseur ont été colorées à l'hémalun éosine. En général les modifications sont localisées au niveau du 19. cortex et au niveau des tubes proximaux et distaux. Il s'agit: a) d'altérations nucléaires: - anisocaryose marquée modification de la chromatine soit délavée, soit mottée avec hyperchromatisme et/ou pycnose, - la membrane nucléaire est irrégulière et parfois incisée; b) d'altérations cytoplasmiques,: - anisocytose avec modification de la bordure en brosse des tubes proximaux et inclusions éosinophiles intracytoplasmiques. Quelques aspects rares suggèrent des nécroses cellulaires isolées dans les tubes proximaux et distaux. Un cas avec abcès a été observé sur un animal au jour J10 avec le PHM. Des dilatations tubulaires, avec cylindres hyalins dans l'ensemble du néphron, sont retrouvées avec parfois un aspect pseudovésiculaire. Ces modifications, lorsqu'elles sont observées, culminent au jour J4 et se stabilisent au J10 avec des variations dans la même série suggérant des variations de sensibilité. Ces altérations ont été observées avec: a) PDD (8 mg/kg), PAC (100 mg/kg) et PHM (50 mg/kg) b) PHD (4 mg/kg): modifications vasculaires sans cylindre hyalin c) PHS (5 mg/kg): dilatation vasculaire et tubes _- 2481285 20. contournés proximaux. Le PHC (120 mg/kg) et le PHIC (150 mg/kg) n'ont pas, sur ce type de préparation, entraînés de modifica- tions significatives. Les parenchymes spléniques et même surrénaliens, occasionnellement prélevés, n'ont pas permis de reconnaître d'anomalies. Il ressort de cette étude que le nouveau composé de la présente invention, le PHIC semble ne provoquer aucune lésion rénale et ce, à une dose 20 fois supérieure à celle du PDD. Des études comparatives de pénétration cellulaire in vivo chez la souris ont été réalisées avec le composé de la présente invention, le PHIC, ainsi qu'avec le PDD. Les résultats sont présentés ci-dessous. Les souris (DBA/2) reçoivent 10 cellules au jour J0 et sont traitées trois jours après (J3) par une quantité de composé de platine voisine de la DL0 chez la souris saine. Deux heures après le traitement au jour J3, les animaux sont sacrifiés, les cellules sont extraites du péritoine de l'animal (environ x 10 6) et lavées plusieurs fois afin d'éliminer le platine extracellulaire et aussi le platine intracellulaire qui ne serait pas lié de manière covalente avec les organites cellulaires. Le dosage du platine dans ces lavages s'effectue par absorption atomique. Le platine est ensuite dosé sur les cellules entières et sur le DNA 21. après extraction au phénol. Dans le cas du PDD (9 mg/kg) il ne pénètre que 0,4% du platine injecté à l'animal, ce qui correspond à 180 x 10- 16g de platine par cellule leucémique. Dans ces conditions, on retrouve un atome de platine fixé pour 30 000 nucleotides, soit au total 1% de ce qui a pénétré est complexe au DNA. Dans le cas du PHIC (150 mg/kg) il pénètre 0, 15% dans les cellules, ce qui correspond à 700 x 10 16g de platine par cellule et on retrouve un atome de platine fixé pour 3 500 nucleotides. Comme dans le cas du PDD, 1% de ce qui a pénétré est complexé au DNA. Les résultats sont rassemblés dans le tableau VIII. TABLEAU VIII - COMPARAISON DE LA PENETRATION DU PDD ET DU PHIC DANS DES CELLULES L1210 GREFFEES CHEZ L'ANIMAL ET.QUANTIFICATION AU NIVEAU DU DNA. COMPOSES DOSE QUANTITE DE PLATINE NOMBRE D'ATOMES DE de (mg/kg) PENERE PAR CELLULE PLATINE FIXES PAR PLATINE (x 1016) NUCLEOTIDE SUR LE (x 101 g) DNA PDD 9 180 1/30 000 PHIC 150 700 1/3 500 C - TOXICITE CHEZ LE BABOUIN: Finalement, une étude toxicologique préli- minaire a été conduite avec le PHIC chez le babouin 22. afin de déterminer les paramètres suivants: a) néphrotoxicité b) hématotoxicité c) toxicité gastrointestinale d) toxicité hépatique e) ototoxicité et aussi de définir la dose maximale tolérable (non mortelle). Pour déterminer cette dose maximale tolérable, on a réalisé deux essais chez les babouins N l et 2 à des doses respectives de 100 et 150 mg/kg, les deux animaux n'ayant pas été préhydratés. Afin de vérifier l'effet bénéfique de l'hydratation, on a administré au babouin N 3 une dose de 200 mg/kg et sous hydratation. BABOUIN POIDS DOSE FREQUIENE DES TRAITEM&ENS N (kg) (mg/kg) 1 8,4 100 6 lau J0 !1 au j37 jl au J58 1 au J84 1lau 105 au J133 2 7,3 150 1 au J0 3 7,5 200 1 au J0 _. _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ __ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ NaCl 9O/00 Le PHIC a été dissous dans une solution de à la concentration de 100 mg/ml, puis filtré 23. sur filtre Millipore de 0,22 micron. Le composé est injecté par voie intraveineuse au niveau de la veine fémorale en 5 à 10 minutes. Le babouin N03 (200 mg/kg) a reçu 700 ml de sérum physiologique par voie intraveineuse. La toxicité gastrointestinale est le premier type de toxicité qui se manifeste en général 1 à 2 heures après l'injection du composé. Dans tous les cas les vomissements sont peu abondants et durent entre 4 et 5 heures. Des prises de sang ont été effectuées à intervalles réguliers et les résultats sont compilés dans les tableaux IX, X et XI. Le jour J0 est le jour du traitement et un prélèvement a été effectué avant l'injection du composé. Les résultats du jour J0 sont donc des valeurs contrôles. J1 = premier jour après le traitement, J2 = deuxième jour, etc. Le babouin N02 (150 mg/kg) est décédé au jour Jl1 très certainement à cause de la néphrotoxicité du composé (créatine à 1 554 en l'absence d'hydratation Il faut noter que ce babouin n'a pas mangé, ni bu pendant il jours. Cette toxicité rénale est en accord avec les connaissances actuelles déjà rapportées pour des complexes du Pt de ce type en l'absence d'hydratation. Il ressort de ces essais que le PHIC à 100 mg/kg, en l'absence d'hydratation, n'a pas provoqué de néphrotoxicité et que, sous hydratation, on n'a pas Nt- ::-:: 24'289 24. observé non plus de toxicité à la dose de 200 mgAkg. Un test d'ototoxicité a été effectué sur le babouin N 3 (200 mg/kg) au jour J31' Ce test consste: a) à mesurer les potentiels évoqués auditifs tor e l'oreille est soumise à un certain nombre (l3" de stimuli (90,80,70,60,50,40,30,20 et 10 déc:la3_s)).. Les enregistrements donnent les temps de Latemne de conduction de l'oreille au cerveau, b) à réaliser le même genre d'expérience par échocochléographie. Cette analyse est beaucoup plus fine que la précédente car elle n'est effetUue qu'au niveau de l'organe de Corti (cochlée). Les fréquences utilisées étaient de 8000, 4000, 20DD9 et 1000 Hertz (90,70,50,30,20 et 10 décibels). les mesures ont été faites avec un appareil -du typea ACI MEDELEC EMPLED MK4 1026. Aucun effet ototoxiqe m'a pu être détecté à la dose de 200 mg/kg de PEIC. Les propriétés du PHIC comparées à celles du ^D peuvent se résumer ainsi: 25. PHIC PDD 1. Hydrosolubilité infinie (>1500 mg/ml) 2 mg/ml- 2. Propriétés antitu- morales a) index thérapeutique -L1210 36,3 6,5 -S180 21,5 5,2 b) animaux survivants chez la leucémie L1210 et le sarcome 180 oui non 3. Néphrotoxicité à la DL0 chez la souris non oui. Le composé de la présente invention est supérieur au PDD en se basant sur des critères de solubilité, de toxicité et d'activité antitumorale (cf. tableaux IX, X et XI, pages 26, 27, 28, 29 et 30). DU BABOUIN N 1: 100 mg/KR contrôle 1 J2 J6 J6 J30 J37 J38 J41 J48 contr81e QUICK Taux de Prothrom- 100 75 80 65 95 85 85 85 100 95 bine (100%) FIBRINOGENE I (2-4 g/l) 3,20 - 2,25 2,40 1,95 1,52 1,46 1,85 2,72 2,70 PROACCELERINE V - 100 - - - - - - (100%) PROCONVERTINE VII + facteur Stuart X - - - 70 - - - (100%) PROTHROMDINE Il - - 95I - - - - ( lno% - - ès - 9- _. _. _. _ (100%) CREATININE E(53-100A noles/l) 117 - 110 91 105 138 99 85 102 136 (53-100jo moles/1) GRANULOCYTES C(4 000 - 700) 2550 - - 2480 4560 3969 2989 4824 4212 3696 (4 oo0 - 7 p0o) PL.AQUETTES (100 000-250 000) 364000 - - 526000 414000 414000 362000 299000 371000. 708000 POID$- (Kg) (Kg) 8,4 - - 7,7. 8,4 - 8,35 - - 7,6 JO = lère injection, J37 = 2ème injection. Les valeurs entre parenthèses indiquent les normes rencontrées chez l'homme. a)' bO a-l Co o TABLEAU IX - ANALYSES TABLEAU IX (suite) - ANALYSES DU BABOUIN N 1: 100 mg/Kg J57 J58 J62 J76 J79 J84 J85 J90 J100 QUICK Taux de Prothrom- 90 - 50 95 95 - 85 - 95 bine (100%) FIBRINOGENE I (2-4 g/l) 2,67 1,86 1,75 2,10 - 2,08 - 2,50 PROACCELERINE V (100%) - - - - 100 - PROCONVERTINE VII + facteur Stuart X - - - 90 (100%) PROTHROMBINE II (100%) CREATINiNE i(3oCREATININE 96 - 136 121 138 - 97 96 110 (53-130frmoles/1) GRANULOCYTES (4000 _ 7000) 2498 - 3726 1071 2541 - 3599 1917 3230 (4000 - 7000) PLAQUETTES (10 000-250 000) 329000 - 378000 375000 382000 - 549000 685000 340000 (1o 000-250 ooo) POIDS - 8,45 - - - 7,93 - - - (Kg) D8 = 3ème injection, D4 = 4ème injection. Les valeurs entre parenthèses indiquent les normes 58' 84 rencontrées chez l'homme. eJ -J ro Co to no TABLEAU IX (suite) - ANALYSES J105 J106 J il J'122 J129 J133 J134 J140 QUICK Taux de Prothrom- 95 75 48 100 100 - - 100 bine (100%) FIBRINOGENE I 2,25 2,20 2,20 2,10 2,15 - - 2,50 (2-4 g/1) PROACCELERINE V - - 100 (oo 100.%) PROCONVERTINE VII + facteur Stuart X - - 39... (100%) PROTHROMBINE II (100%).. CREATININE CREATININE 60 120 102 90 - 126 114 (53-130/umoles/l) GRANIJLOCYTES (4000 - 7000) 2030 10120 1121 1232 5406 - 7245 4794 PLAQUETTES (10P5AQUETTES0266000 231000 345000 348000 508000 - 580000 441000 (100 000-250 000) POIDS 8,59 - - - - 7,65 - - (kg) J105 = 5ème injection, J133 = 6ème injection. Les valeurs entre parenthèses indiquent les normes rencontrées chez l'homme. X BUN = 4,5 mmnoles/l (valeurs normales comprises entre 3 et 7 mmoles/l) o rx, Co DO DU BABOUIN No 1: 100 mg/Kg 29. TABLEAU X - ANALYSES DU BABOUIN N0 2 : 150 mg/kg J000 J1 J4 J 1 (contrôle) (contr8le) QUICK Taux de Pro- 95 90 60 85 55 thrombine (100%) (2-4 g/1) (2-4 g/l) 1,85 1,46 1,46 2,82 4,20 PROACCELERINE V - 70 - 100 (100%) PROCONVERTINE VII + Facteur Stuart X - - 62 - 55 (100%) PROTHROMBINE II 42 - 55 - - ' 2 - 55 (100%) CREATININE 125 130 96 245 1552 (53-100/moles/1) GRANULOCYTES GRANULOCYTES 3072 6885 9672 1988 555 (4000-7000) PLAQUETTES 507000 293000 261000 212000 174000 (100000-250000) POIDS - 7,3 - - 5,5 (kg) J0 = lère injection. Les valeurs entre parenthèses indiquent les normes rencontées chez l'homme. sazx1uoDuae sauLou sal 1uanebptUT sasQt4uaaed aX4ua salnalA sa/ uo!ma.CuT a.QI = 0 úú'9 6'S 9'5 - - 1ú'5 - S'9 S'L () SO1IOdI sGroa 00066Z OOOLSt 00099ú OOOZIE 000t11 0O1Ot' 00080Z OOOOL OOOT0 (oooosz-ooooor) S3LLlEldVId IúLt ZSLOI EL8Rt ZZL OSSúE S06L 9úZE95t 009 (000L-0Ot) 6 VT01 L6 811 S9Z 9t9 OSú 0tT E9 (9/salco W OE0-Eú) MNINITID '' ' - SZ 0ú- (%001) II MNI W JOeTIcI O (%00I) - -- - - úZ S > - X 17enqs mane-o4 + IIA SNIJ/MMANOCd - -- - -' 001 ooi (%00 t) A NIIdMUDVO>Id OS'I 59z OO'Z O9'Z S8'ú 0o'o 00'ú OL'Z LO'Z (1/6 gz) I 2NSoNI1-gIt (%001) au!q S6 ú6 001 O 006 S8 ú OT 6 - (06)olap xne 0E UtlDaq'otp xne,]' MDIfD (1OlOaUCO) ftr úr81r ú1 Z1 9r t? r 017Q V6 OOZ N NI a ssqN - IX aav oo: , Nrnoev nu ssxrv - Ix fl'mvL o0 co o4 cm À sumoq, I zaqo 31. Le PHIC manifeste, en outre, une activité anti- microbienne et il peut être utilisé comme désinfectant. En tant qu'agent anti-tumoral, le complexe de l'invention peut être administré par la voie orale, intramusculaire ou intraveineuse. Il peut être administré sous forme de capsule, poudre, comprimé ou soluté injectable associé à des véhicules et excipients pharmaceutiquement acceptables. Les doses moyennes administrables journellement peuvent varier de 1 mg à 400 mg/kg de poids corporel.