FR 2461002 A1 19810130 FR 7918282 A 19790713 L'invention concerne des procédés et produits applicables à la peau humaine et plus particulièrement à l'épiderme humain adulte. Elle a notamment pour objet un procédé pour stimuler la croissance des cellules d'épiderme humain,en particulier adulte,et des produits cosmétiques, pharmaceutiques et de diagnostic faisant application dudit procédé. La peau est le principal tissu qui se trouve exposé aux effets mutagènes, et, partant,potentiellement cancéri- gènes,des agents environnementaux chimiques et physiques. Ceci est particulièrement vrai en ce qui concerne les radia- tions de toute nature. La peau est composée de tissus d'o- rigine mésenchymateuse(le derme et les vaisseaux sanguins) et de tissus d'origine ectodermique (l'épiderme). Or, si l'on sait extraire du derme les cellules mésenchymateuses (fibro- blastes) pour les cultiver et étudier les effets mutagènes et carcinogènes des facteurs environnementaux chimiques et physiques,on éprouve des difficultés à faire de même à partir de l'épiderme. L'une de ces difficultés n'avait pas encore été surmontée. Il s'agit de l'application aux cellules épi- dermiques adultes en culture des procédés d'étude cytogéné- tique,lesquels impliquent la préparation et l'analyse des chromosomes d'une part et la préparation et la numération des échanges de chromatides soeurs (SCE) d'autre part. De faitsi quelques rares publications font état d'études chro- mosomiques succinctes,il n'y a pas d'étude chromosomique approfondieen particulier dans le domaine du diagnostic des maladies humaines héréditaires touchant l'épiderme,et, à la connaissance du demandeur,il n'existe pas de référence bibliographique sur les SCE. Une série de travaux récents permet de penser que l'augmentation des SCE est un indicateur,à la fois sensible et fidèle,de l'action mutagène d'un produit chimique ou d'une radiation. L'application des techniques de révélation des SCE aux cellules épidermiques humaines adultes est donc d'une importance certaine. L'invention a notamment pour objet un procédé appli- cable à la préparation et à l'analyse des chromosomes ainsi qu'à la préparation et à la numération des SCE dans les cellules épidermiques humaines adultes en culture. Grâce à l'inventionon peut en effet induire une multiplication mitotique de ces cellules sur un substrat de verre habi- tuellement hostile. L'invention permet également d'apporter une solution à tous les problèmes concernant la croissance et la culture de cellules épidermiques,en particulier chez l'homme et spécialement chez l'adulte. Ainsi,outre l'application cyto- génétique précédemment mentionnée, l'invention peut-elle être mise à profit dans le traitement des brlés,dans le domaine de la cosmétique et de la pharmacologie cutanée ainsi que pour la culture de longue durée des cellules épi- dermiques. La présente invention met à profit les travaux an- térieurs rapportés par ARRUTI C. et COURTOIS Y. Exptl. Cell. Res.117, 283-292 (1978). Ces auteurs ont en effet constaté qu'un extrait rétinien,désigné par l'abréviation RE,était un facteur de croissance des cellules de l'épithélium du cris- tallin en culture. L'homme de l'art pourra se reporter,si besoin est,à cet article pour y trouver les indications né- cessaires concernant cet extrait REainsi que les propriétés qui ont été observées. Les auteurs ont utilisé un extrait total rétinien obtenu par extraction à l'aide d'une solution saline aqueuse,en l'espèce une solution Dulbecco,en tampon phosphate à pH 7,2,par exemple du type mis sur le marché par la Société FLOW Laboratories. Les rétines de bovins sont mises en contact intime avec une telle solution. Après un certain nombre de traitements physiques de centrifugation et de filtration,on isole l'extrait rétinien RE. Toutefois, les observations faites dans cet article sont limitées à la croissance des cellules de l'épithélium du cristallin. Selon la présente invention,on peut stimuler la crois- sance en culture des cellules épidermiques,indépendamment de l'âge et de l'espèce du donneur,en utilisant le facteur de croissance RE. Selon l'invention également,le facteur de croissance RE est efficace sur les cellules épidermiques adultes,et en particulier humaines. Sous sa forme la plus générale,l'invention concerne un procédé pour stimuler la croissance des cellules d'épi- derme,en particulier adulte,caractérisé en ce qu'on met en contact les cellules de l'épiderme avec un extrait salin aqueux de tissu oculaire (ou extrait RE). Pour l'obtention de l'agent actif RE, on peut faire appel à la technique décrite dans l'article de C. ARRUTI et Y.COURTOIS mentionné précédemment. Le matériau de départ,à savoir les rétines d'yeux de bovins, est en effet aisément accessible en abondance. Par l'expression "extrait de tissu oculaire",on dé- signe un produit qui peut être extrait de divers tisstus de l'oeil,tels que la chroide, l'iris et l'humeur vitrée. Cette définition ne comprend pas le cristallin et l'humeur aqueuse, tissus qui ne contiennent pas de RE. En vue de l'extraction,on utilise une solution saline aqueuse quelconque,tamponnée à un pH voisin de 7,2, et capa- ble de fournir un extrait aqueux contenant le RE. - On a-constaté avec surprise qu'en utilisant le fac- teur RE,selon l'invention,dans des cultures de cellules d'épidermes humains adultes,il devenait possible d'apporter une solution à des problèmes qui n'avaient pas été résolus par la technique antérieure. Ainsi,l'invention permet l'ana- lyse chromosomique et l'évaluation des S.C.E dans des cultu- res in vitro de kératinocytes humains adultes,grace à l'acti- vation de l'activité mitotique des kératinocytes qui résulte de l'utilisation du RE. L'effet activateur du RE sur la croissance des cellu- les épidermiques sera illustré en référence aux figures 1 et 2 ci-après. On constate une augmentation de la surface cou- verte pendant un nombre de jours donné par le même nombre de cellules ensemencées. La densité cellulaire par unité de surface,révélée par coloration,est plus forte pour les cellu- les Traitées. Cette coloration plus forte n'est pas due à une croissance en hauteur des cellules,mais bien à une augmenta- tion de l'activité mitotique. On a déjà indiqué précédemment que la préparation de chromosomes métaphasiques de cellules épidermiques humaines adultes était impossible en l'absence d'activateur de la croissance cellulaire,voir par exemple GREEN H. Cell 15, 801-811(1978). Des cellules sur lamelles de verre en milieu de culture ordinaire (TCM) en présence de RE permettent d'ob- tenir un nombre de mitoses répondant aux besoins de l'inven- tion. Selon les constatations de l'art antérieur,les cellules primaires de kératinocytes ont tendance A s'empiler et à ké- ratiniser. Ainsi,quelques métaphases sont situées sous une ou plusieurs couches de cellules,ce qui empêche la disper- sion des chromosomes. Une partie des mitoses "spontanées" est donc perdue et le nombre restant est trop faible. En re- vanche,l'addition de RE induit une forte augmentation de l'ac- tivité mitotique (voir figure 3 ci-après) qui,en combinaison avec un traitement de 15 heures par le sel de colchicine, disponible sous la dénomination "Colcemid" (Gibco),permet la préparation de métaphases bien étalées en nombre suffisant. En moyenne,20 métaphases analysables par lamelle peuvent être obtenues en routine. L'action du RE sur les cellules épidermiques adultes diffère de celle du produit EGF (Epidermal Growth Factor) voir COHEN S. et ELLIOTT G.A. J. Invest. Dermatol..40, 1-5 (1963),et COHEN S. dans Hormones in Development. Hamburgh M - et Burrington E.J. ed. Meredith Corp. N.Y. 753-766 (1971), qui est esoeriellement actif sur cellules foetales ou de nouveau- né. De plus,ces deux agents mitogènes diffèrent complètement par leur action sur d'autres cellules cibles. On a également constaté que le RE n'était pas mutagène, ce qui est une caractéristique très importante pour les cellules épidermiques adultes. Cette propriété peut d'ailleurs être mise à profit pour la détection de l'action d'agents mutagènes. Des essais ont montré que l'augmentation de la croissance de la culture cellulaire était bien due à une réelle multiplication des kératinocytes,et non à celle d'éventuels fibroblastes qui auraient pu être détachés du derme pendant la trypsinisation. Ainsi, l'examen microscopique en contraste de phase révèle que les cultures sont composées d'un seul type cellulaire,d'allure épithéliale (voir figure 3 ci-après). En outre,la réaction à la leucine-aminopeptida- se (LAP)marqueur enzymatique des cellules d'origine mésen- chymateuse in vivo (NACHLAS M.M., CRAWFORD D.T. et SELIGMAN A.M. J., Histochem. Cytochem. 1957, 5,p.264-278) et in vitro (FRITSCH P., DIEM E. Arch. Derm. Forsch 243 364-372 (1972),REGNIER M., DELESCLUSE C. et PRUNIERAS M. Acta Dermatovener 53 241-247 (1973) a été utilisée pour détecter les fibroblastes dermiques et s'est montrée complè- tement négative. L'effet potentialisateur de croissance du RE sur les cellules épidermiques humaines adultes peut recevoir de nombreuses applications. Dans une application donnée à titre d'exemple,l'in- vention permet l'analyse chromosomique et l'évaluation des SCE dans des cultures in vitro de kératinocytes humains adul- tes. On peut en effet préparer des chromosomes métaphasiques bien dispersés,en nombre suffisant pour l'analyse caryotypi- que et également décompter les SCE dans ce type cellulaire. Les méthodes cytogénétiques,et en particulier les techniques d'évaluation des échanges de chromatides soeurs (SCE),ont été récemment développées (voir PERRY P. et WOLFF S. Nature 251, 156-158(1974). Cette dernière technique est d'un intérêt particulier en pharmacologie cutanée car le nombre d'échanges est directement lié à la mutagén se (PERRY P. et EVANS H. J. Nature 258 121-125(1975) et CARRANO A.V.,IHOMPSON L.H.,LINDL P.A. et MINKLER J.L.,Nature 271, 551-553 (1978). De ce fait,la numération des SCE est pré- cieuse pour estimer le potentiel carcinogène d'un produit cosmétique, d'une thérapeutique ou, plus généralement,d'une exposition volontaire ou accidentelle aux facteurs envi- ronnementaux chimiques ou physiques(radiations de toute nature'. Dans la littérature,il y a très peu d'informations concernant la cytogénétique des cellules épidermiques et il n'y a pas du tout de travaux sur les SCE Cette pauvre- té est sans doute due à trois difficultés majeures. La première réside dans l'étalement des chromosomes. La trypsine est habituellement utilisée pour récolter les cellules en mitose et disperser les chromosomes. Cependant, pour récolter des kératinocytes adultes en culture,il faut utiliser de l'EDTA en plus de la trypsine (RHEINWALD J.G. et GREEN H.,Cell.6 331-344(1975) et 1'EDTA interfère avec le gonflement des cellules en solution hypotonique,qui consti- tue un impératif de base à un bon étalement chromosomique. Les chromosomes peuvent être dispersés de façon satisfaisan- te en traitant directement la culture in situ,mais on se heurte alors à une deuxième difficulté,car la meilleure sur- face pour l'étalement des chromosomes est le verre,et le ver- re est un substrat mauvais pour l'attachement des kératino- cytes (LIU S.C. et KARASEK M7J. Invest. Dermatol. 71,157-162 (1978). La troisième difficulté est que,pour obtenir des SCE., deux cycles de replication consécutifs des mêmes cellules sont nécessaires pour la visualisation du marquage différentiel des chromatides avec la technique de substitution par la bromo deoxyuridine (BUdRd(WOLFF S. et PERRY P.Chromo- soma 48, 341-353(1974)-KATO H.Nature 251, 70-72 (1974). La culture doit donc avoir une grande activité mitotique,ce qui n'est pas le cas des kératinocytes humains adultes cul- tivés sur substrat de verre. Il est très important,pour la préparation des SCE, qu'un nombre appréciable de cellules se divisent de manière synchrone. Comme il a déjà été précisé plus haut,deux cycles cellulaires sont nécessaires à une même cellule pour avoir l'un de ses brins d'ADN bisubstitué par le BUdR, préliminaire indispensable à la visualisation des SCE. De plus,ces deux cycles doivent avoir lieu dans un intervalle de temps raisonnaie (50-70 heures),pour les besoins pratiques. Les cellules épidermiques en culture primaire ne sont pas synchronisées et les cellules qui se repliquent à un moment donné n'appartiennent pas nécessairement au même groupe de cellules en replication. Ceci signifie que,seule une partie des cellules en replication pourra entreprendre un deuxième cycle de replication pendant la relativement courte période de temps alloué. Le grand intérêt du RE est d'induire une synchronisation suffisante pour permettre à environ 50% des métaphases d'être bisubstituées en environ heures. Les SCE peuvent alors être comptées sur environ métaphases par lamelle. Selon un mode de réalisation,on effectue une mise en culture normale préalable des cellules épidermiques en l'ab- sence de facteur de croissance. Dans une période comprise entre 5 et 10 jours,par exemple au bout de 8 jours,on intro- duit une première quantité efficace de RE. Le lendemain, ou 48 heures après,on effectue une autre application de RE en vue d'obtenir une seconde replication des cellules. Toutefois,ce mode de réalisation n'est donné qu'à titre d'exemple.En variante,on peut introduire le RE au dé- part, mais ilifaut veiller à ce que les développements de cellules soient synchronisés. Il faut donc,si l'on adopte cette variante de réalisation, introduire le RE dès l'origine dans le système de culture cellulaire,et arrêter ensuite la culture pour permettre une synchronisation des cellules. L'invention concerne donc des produits de diagnostic permettant d'étudier les chromosomes de la cellule de l'épiderme adulte humain. De tels produits et leurs procédés de mise en oeuvre peuvent permettre la détection des anomalies chromosomiques naturelles ou induites. Des facteurs inducteurs sont notamment des irradiations,par exemple sous l'effet des rayons U.V.,ou résultant de phénomènes accidentels,ainsi que de tous rayonnements,tels que les rayons gamma,les rayons X, les neutrons etc....Parmi les maladies susceptibles d'être ainsi déceléeson peut citer des maladies génétiques, le psoriasis et tous les types de cancers de la peau. Les cellules kératinocytes adultes sont en effet reconnues comme cellules cibles de la cancérogénèse de la peau. L'avantage de l'invention est de permettre une étude directe des comportements cellulaires épidermiques humains et non pas d'effectuer des études in vivo, comme c'était le cas dans la technique connue,sur des échantillons partiels cellulaires, par exemple des fibroblastes. L'invention peut être appliquée à titre préventif pour étudier le comportement des peaux dans certains environ- nements,par exemple pour sélectionner le personnel devant être amené à travailler en environnement nucléaire. 24 6 1002 Dans de telles applications,l'invention met à profit le fait que le RE n'induit pas de mutagénèse. Ainsi,lorsqu'on compte les échanges de chromatides,on constate que le taux d'échange est inférieur à 3 par mitose,ce qui correspond à un chiffre très faible que l'on dénomme habituellement "échanges chromatides spontanés". On constate également que l'extrait RE,utilisé selon l'invention,est exempt de toxicité. Lorsqu'on double la dose de RE utilisée,les cellules ne meurent pas. Cette propriété est évidemment très importante pour les applications qui vont être maintenant indiquées. - Sous un autre aspect,l'invention est applicable à un procédé de fabrication de greffes. On sait en effet que, pour le traitement des brûlésil est important de pouvoir u- tiliser la peau intacte qui reste, afin d'éviter les problèmes posés par les défenses immunologiques du receveur en cas de greffe hétérologue. On préfère donc prélever sur les brûlés des parties de peau,afin de réaliser une autogreffe. Le tissu prélevé fait ensuite l'objet d'une séparation mécanique qui permet de multiplier deux à trois fois la surface couverte grâce au développement des cellules de la peau prélevée. Un perfectionnement important a été apporté à cette technique (voir IGEL H.J. FREEMAN A.E., BOECKMANN C.R. et KLEIFELD K.L. Arch. Surgery 1974,108, 724-729.); Selon la technique proposée par ces auteurs,des mor- ceaux de peau sont prélevés sous forme de petits fragments en vue d'une autogreffe ultérieure. Le fractionnement des morceaux prélevés est effectué 3 à 5 semaines avant la greffe, et il convient donc de cultiver la peau prélevée. Le problème majeur est celui du transport des cellules épidermiques.A cet effet,on fait appel à des lambeaux de peau de porcs tués sur lesquels on met en place les fragments prélevés. Au bout d'une période d'environ 3 mmaines,la peau de porc est couverte d'une culture d'épiderme. Cette technique est intéressante, car elle permet de prélever les morceaux de peau sur le patient lui-même. Par ailleurs,il n'y a aucune réaction indésirable vis-à-vis de la peau de porc. On obtient alors une surface couverte qui est de 20 à 40 fois la surface des fragments pré- levés au départ. Cette technique présente cependant des inconvénients. En effet,la partie du greffon qui est placée sur le tissu du patient est en contact avec celui-ci par l'intermédiaire de l'épiderme mort de la peau de porc portant l'épiderme cultivé. La présence de la peau de porc constitue un corps étranger indésirable. Un autre inconvénient est celui du fractionnement mécanique de la peau prélevée,car les frag- ments restent nécessairement assez gros. Il est souhaitable d'aboutir au fractionnement ultime,lequel,dans le cas idéalest constitué par la cellule. On a donc récemment proposé une technique encore plus intéressante,dérivée de la technique de IGEL et FREEMAN précités,selon laquelle on fractionne le greffon par un procédé enzymatique, 1 à 2 semaines avant la greffe. Ce temps est utilisé pour faire proliférer in vitro les cellules épidermiques. Pour assurer à ces cellules épidermiques cultivées un support qui per- mette leur prolifération in vitro, et ensuite leur transplanta- tion,on a enlevé 1' épiderme de lambeaux minces de peau hu- maine ou de peau de porc. Les lambeaux de derme obtenus ont été tués et conservés par congélation. L'avantage des lambeaux de derme désépidermisés est qu'ils porte-nt leur "lamina densa",c'est-à-dire une couche de collagène sur laquelle les cellules épidermiques s'attachent et prolifè- rent. Des greffons recombinés sont ainsi obtenus1formés de derme allo- ou xénogénique recouvert d'épiderme autologue. De tels greffons permettent de multiplier la surface épidermisée d'environ 80 fois en deux semaines. Une telle technique a été par exemple décrite dans un exposé présenté à l'occasion des 4ème journées nationales des soins aux brûlés 21-22 Mai 1979 - à La Baule,France. Quelle que soit la technique de greffe mise en oeuvre., il importe d'augmenter la vitesse de prolifération des cellules épidermiques. On conçoit en effet ltintérêt d'ef- fectuer des cultures importantes,mais surtout de pouvoir réaliser la culture dans un temps relativement court,par exemple inférieur ou égal à une semaine,pour permettre un traitement efficace du malade. L'invention peut être appliquée avec avantage à une telle culture de cellules,puisque la surface couverte par la croissance des cellules épidermiques sera propor- tionnelle à l'activité du facteur de croissance RE.L'utili- sation de l'extrait RE procure des avantages puisqueainsi qu'il a été mentionné précédemment,il ne provoque pas d'effet mutagène. On constate également que les cellules épi- dermiques,après leur croissance en présence de RE,ne sont pas modifiées. Ainsi,le procédé de l'invention trouve une application intéressante dans la, fabrication de greffons utilisables pour le traitement des brûlés. En prélevant une petite surface de peau,par exemple de l'ordre de 2 à 3 cm2,on peut obtenir une suspension de cellules épidermiques. Ainsi qu'on l'a mentionné précédemment, la culture peut être initiée et, après 8 jours environ,les colonies cellulaires sont suffisamment poussées. L'addition d'extrait rétinien RE pendant 2 jours consécutifs permet d'obtenir la synchronisation des mitoses. Sous un autre aspect encore,l'invention peut recevoir des applications cosmétiques. Les agents cosmétiques conven- tionnels exercent un effet sur l'apparence de la partie du corps à traiter,par exemple la peau ou les cheveux. On cons- tate cependant que les formulations cosmétiques ont de plus en plus tendance à contenir des agents actifs sur le métabo- lisme. En ce qui concerne l'application sur la peau,par exemple,on recherche des produits qui augmentent la croissan- ce des cellules de l'épidermecar on a constaté que ladite croissance conférait à la peau une apparence satinée amélio- rée. De même,on se préoccupe de mettre au point des produits favorisant la croissance des cheveux,lorsqu'ils sont appli- qiés sur la chevelure ou sur le cuir chevelu. Selon l'invention,on peut donc introduire l'extrait RE directement dans une présentation convenant à des appli- cations cosmétiques. Bien entendu,cette présentation devra être adaptée à l'application cosmétique recherchée,qu'il s'agisse par exemple de la régénération de la peau.de la lutte contre le vieillissement ou d'une application sur les il cheveux. En outre,on peut utiliser l'extrait RE dans des applications plus spécifiques,en particulier pour le traitement de cellules épidermiques déficientes. La plupart des agents actifs connus dans ce domaine sont inutilisables pour le traitement direct de la peau. Beaucoup d'entre eux sont tirés des euphorbes,et sont considérés comme des co-carcinogènes. Leur application généralisée est donc à écarter. Quant au facteur EGF,il apparaît comme inactif in vivo,ou, à tout le moins,son activité in vivo n'a pas encore été démontrée. Par ailleurs, son extraction est coûteuse. Les applications cosmétiques d'un tel produit à une large échelle ne sont donc pas prévi- sibles. On connaît également la propriété de la toxine du choléra d'activer fortement l'épiderme,mais un tel produit reste d'un emploi difficile. Au contraire,selon l'invention,on peut utiliser l'extrait RE pour son activité sur les cellules de l'épider- me,en tirant profit de son absence de toxicité. Ainsi,l'invention concerne-t-elle une composition cosmétique caractérisée en ce qu'elle comprend,à titre d'agent actif,l'extrait RE. Une telle composition peut étre appliquée par voie locale sur la partie du corps à trai- ter. Pour les besoins de l'invention,on peut utiliser n'im- porte quel véhicule déjà proposé pour l'application sur la peau ou les cheveux. On peut notamment utiliser des composi- tions sous forme de lotions,gels,crèmes,pommades etc....Des exemples de compositions convenant à l'application locale sont décrits par B. KAMMERAU et al. dans Arch. Derm. Res. 255 31-42 (1976). La quantité de RE à mettre en oeuvre dans les composi- tions de l'invention dépend de l'application envisagée. Bien entendu,l'application locale peut être renouvelée pour apporter la quantité d'agent actif nécessaire. En règle géné- rale,des doses de 50 à 400Og en protéines totales d'extrait RE par ml de culture de cellules épidermiques se sont avé- rées convenables. Des doses de 50 à lOOtg sont préférés. L'invention est également applicable à un procédé de culture de longue durée de cellules épidermiques. Les études concernant les cellules de la peau humai- ne adulte se heurtent à de nombreuses difficultés,surtout lors- qu'il s'agit de cellules d'épiderme humain adulte. Pour cet- te raisonla plupart des expériences sont réalisées sur des cultures de cellules non épidermiques spécialement fibro- blastiques. Les fibroblastes sont connus pour posséder des propriétés de croissance en culture qui permettent des études 1o pratiques. Cependant,la croissance des fibroblastes en cultu- re est limitée, spécialement chez l'homme. Il existe en effetcomme une programmation des fibroblastes humains qui les empêche de se dédoubler indéfiniment. D'autre part,on sait que le nombre de dédoublements des fibroblastes est plus important pour les cellules embryonnaires que pour les cel- lules adultes. Chez l'adulte,la culture meurt après une tren- taine de dédoublements. Quelques cellules animales semblent échapper à cette loipar exemple les cellules de souris,mais, chez l'hommele seul moyen de modifier cette limitation na- turelle de croissance est d'introduire dans la culture cellu- laire des virus ou autres substances exogènes. La limitation de croissance déjà observée chez les fibroblastes est encore plus nette pour les cellules épidermi- ques. La culture des cellules de l'épiderme de nouveau-né peut être dédoublée 4 à 5 fois,alors que les cellules issues de la peau adulte ne sont pratiquement pas "dédoublables". Le meilleur système actuel pour prolonger les cultures de longue durée de l'épiderme humain a été proposé dans l'article de RHEINWALD et GREEN cité supra. Il consiste à cocultiver des cellules épidermiques humaines avec des fibro- b4astes de souris 3T3 irradiéesservant de couche nourricière. Ces cellules irradiées ont la propriété de favoriser l'attachement des kératinocytes humains au cours des dédou- blements de la culture,ainsi que de leur fournir des substan- ces nourricières d'origine conjonctive augmentant leur crois- sance. L'irradiation subie bloque leur multiplication propre. De plus,les cellules 3T3 de souris ont un effet plutôt inhi- biteur sur la croissance des fibroblastes humains,ce qui permet aux auteurs de contrôler la pureté de leurs cultures * tout en partant de suspensions parfois fortement bétérogè- nes. Au cours des différents dédoublements de culture,les éventuels fibroblastes humains sont retirés par l'action de 1'EDTA en même temps que les cellules de souris 3T3,les kératinocytes humains restant attachés au substrat pour être ensuite détachés enzymatiquement et mécaniquement. Le système de culture de longue durée peut recevoir l'adjonction de différents facteurs de croissance,c'est-à-dire des pro- duits capables de stimuler la croissance des cellules,et en particulier celles des cellules extraites de tissus adultes. Ainsi, COHEN S. et ELLIOTT,G.A. dans la revue J. Invest. Dermatol.40 1-5 (1963)ont décrit un produit susceptible de favoriser la croissance des cellules de l'épiderme de souris. Des essais ont été réalisés en culture et les auteurs (RHEINWALD, J.G. and GREEN H. Nature 1977,265, 421-424) cons- tatent que ce facteur de croissance est efficace sur les cultures cellulaires épidermiques de nouveau-né. La question de l'effet activateur de l'EGF sur la croissance des cellules épidermiques adultes reste posée.En culture,et en présence de cellules de souris 3T3,une certaine activité a été rapportée sur les cellules humaines. Employé seul sur les cellules de cobaye,il s'est révélé inefficace. Enfin, chez le sujet entier,les preuves d'activation manquent. D'autres activateurs ont été décrits et on peut,à titre de référence bibliographique,citer l'article de D.GOSPODAROWICZ dans Nature 249 (1974) 123. L'auteur décrit un facteur de croissance désigné par l'abréviation FGF,mais on ne trouve aucune indication sur l'activité de ce produit dans la croissance des cellules épidermiques humaines. La toxine cholérique a-aussi été étudiée dans les cultures de kératinocytes humains (GREEN H. Cell 1978,15 801-811). Contrairement à son action sur beaucoup d'autres cellules étudiées,ce produit active fortement la croissance des kératinocytes humains,surtout des nouveaux- nés. Cependant, il se lie fortement à la membrane des cellules et cette liai- son est irréversible. Selon l'invention,les cellules peuvent être directement cultivées sur un substrat,par exemple plastique,sans adjonc- tion d'autres cellules. Le RE joue le rôle de facteur nourricier,son action plutôt négative sur les fibroblastes permettant à une culture,déjà purifiée au départ,de stabili- ser à un nombre très faible la quantité de fibroblastes éventuellement contaminants. La longévité de la culture est ainsi accrue de manière très simple. De plus,l'activité certaine du RE sur les cellules adultes en fait un agent mi- togène de choix pour le matériel qui ne réagit que faiblement au système de culture décrit précédemment avec des cellules de souris 3T3. Les études cytogénétiques décrites ci-dessus montrent de plus que ce produit n'a pas d'effet ni sur les chromosomes,ni sur les échanges de chromatides des kératino- cytes. Il n'est donc pas a priori suspect d'avoir des effets toxiques ni cancérigènes sur ces cellules. Grâce à l'utilisation de RE,selon l'invention,les cultures de kératinocytes humains adultes peuvent ainsi être prolongées. Un tel procédé de culture est très simple à mettre en oeuvre. Il respecte en outre la nature normale des kératinocytes humains adultes,leur fournissant uniquement un apport nutritif mitogène d'origine animale physiologique. L'invention sera maintenant davantage illustrée sans être aucunement limitée par des expériences sur la culture de cellules épidermiques humaines adultes et par des exemples précis concernant les caryotypes et les échanges de chromati- des soeurs sur les kératinocytes humains adultes en culture. Origine et préparation de la peau humaine La peau humaine adulte est prélevée au cours d'in- terventions chirurgicales. La peau mince,prélevée au dermatome électrique,est :30 placée directement dans un flacon contenant une solution d'an- tibiotiques (solution II,voir ci-après) et gardée à +4OC jus- qu'à 5 jours. La peau totale,non dégraissée,est placée dans un bocal contenant la solution Il. Elle *est conservée ainsi 24 heures. La peau est ensuite dégraissée au bistouri,et fixée -solidement,derme en bassur une plaque de liège passée à l'al- o;ol à 70 . La peau est ensuite coupée finement à l'aide d'un électrokératome réglé sur 0,4 mm d'épaisseur. Compte-tenu 246 1002 des variations d'épaisseur de l'épiderme suivant l'âge du donneur et la localisation du prélèvement,cette épaisseur de 0,4 mm correspond à l'épiderme total plus une partie du derme papillaire. La peau ainsi amincie est replacée dans la solution Ilet peut être conservée à + 4 0C jusqu'à 3 jours. La peau mince et la peau totale ainsi préparée sont traitées de façon identique. Les solutions de rinçage antibiotiques sont préparées dans 500 ml de milieu de base Eagle,comme suit: Solution I: produit antibiotique antimycotique disponible sous la dénomination ABAM (GIBCO:20 ml Gentalline: 160 mg Solution II: ABAM: 10 ml Gentalline: 80 mg Solution III: ABAM - 5 ml. Toutes les cultures ont été réalisées dans le milieu suivant: Dulbecco's Modification of Minimum Eagle Medium(Flow) en tampon HRépès,supplémenté à 20% de sérum de veau foetal. On a ajouté 1% d'ABAM (Gibco) au milieu complet. Préparation des suspensions de kératinocytes à partir de la peau totale émincée La peau est passée successivement dans les trois solu- tions d'antibiotiques: Solution I: 30 minutes Solution II: 30 minutes Solution III: 3 fois 10 minutes Entre chaque bain,elle est essorée sur un tampon de gaze stérile. La peau est ensuite stockée dans la solution III. En vue du découpage,la peau est étalée,derme en bas, sur un couvercle de boîte de Pétri en verre stérile. A l'aide d'un bistouri stérile,elle est découpée en fragments d'environ 0,25 cm de côté. Les fragments sont ensuite placés dans une solution de trypsine (Flow) à 0,25 % dans du tampon phosphate de Dulbecco sans calcium ni magnésium(PBSFlow),à raison d'une vingtaine de fragments pour 5 ml de solution de trypsine, dans des tubes coniques de 50 ml (Falcon 2070). Les tubes sont alors placés au réfrigérateur à + 4 C pendant une nuit. Le lendemain matin,les fragments sont récupérés à l'aide d'une grande pince stérile et placés sur un couvercle de boîte de Pétri en verre stérile. Ils sont étalés,épiderme contre le verre. Le derme et l'épiderme se séparent aisément avec deux pinces fines. Tous les fragments sont ainsi séparés, et placés dans un tube contenant 5 ml de PBS. Le couvercle est rincé avec 2 ml de PBS-qui est ajouté dans le tube.Les tubes,une fois prêts1 sont agités fortement à 80 tours/minute (Vortex),ce qui permet de libérer les cellules attachées à la surface du derme et de dissocier les couches inférieures de l'épiderme. Le PBS-contenant derme + épiderme + cellules dissociées - est versé dans un bécher à travers deux épaisseurs de gaze stérile,permettant de retenir le derme, l'épiderme et les gros aggrégats cellulaires. Les suspensions récupérées ainsi sont replacées dans les tubes et centrifugées à 800 tours/minute pendant 10 mi- nutes. Le PBS est rejeté et les culots cellulaires sont remis en suspension dans 4 ml de milieu complet par tube. Le comptage des cellules est effectué après dilution au 1/2 d'un-aliquote dans du Bleu Trypan,à l'aide d'un héma- timètre de Burker. Etude de la stimubtion des kératinocytes humains adul- tes par le RE a) Essais à partir de 100.000 cellules par cm2 Les suspensions de cellules sont ajustées dans du mi- lieu complet à 400.000 cellules par ml et réparties dans deux plaques à 24 puits de type Costar à raison de 0,5 ml de suspension par puits. Les plaques sont mises à l'étuve à 37 C pendant 24 heures (jour 1); le milieu est renouvelé tous les deux jours et,dans une des deux plaques, 10 gl de RE,correspondant à gg de protéines,sont ajoutés dans tous les puits, tous les jours. L'autre plaque sert de témoin. Le 8ème jour,le milieu de culture des deux plaques est rejeté,les cellules rincées au PBS et fixées par le fixateur de Carnoy(alcool méthylique: 3 volumes,acide acétique:l volume) pendant 20 minutes à la température ambiante,puis séchées à l'étuve à 37 C pendant une heure. Les cultures sont alors colorées (Giemsa RAL: 4 volumes;tampon phosphate Sorensen,pH 6,7: 4 volumes;eau déminéralisée 92 volumes) pendant 10 minutes,rincées à l'eau déminéralisée et laissées sur un papier filtre jusqu'à séchage complet. b) Essais à partir d'un nombre de cellules variable Les suspensions de cellules sont ajustées,dans du milieu complet à 105, 2.10, 4.105, 8.105, 12.105,16.105 cellules par ml. Chaque dilution est répartie dans quatre puits de deux plaques dans un ordre croissant,à raison de 0,5 ml par puits. Deux plaques sont ainsi remplies et mises à l'étuve à 37 C. Les plaques sont alors traitées exactement comme les essais (a) précédents,l'une d'elle étant soumise à l'action du RE,l'autre servant de témoin. La fixation et la coloration, le 8ème jour,sont réalisées de manière identique. La surface colorée visible dans les puits et l'inten- sité de la coloration indiquent l'intensité de la croissance des cellules. Pour quantifier cette croissance et pour véri- fier qu'il ne s'agissait pas d'un meilleur étalement des cellules,on a effectué un comptage de mitoses. Dans chaque puits de chaque plaque,on a compté le nombre de mitoses présentes dans cinq champs microscopiques à un grossissement x 250. On a ainsi déterminé le nombre de mitoses par champ pour chaque dilution de cellules au départ, et on a comparé les résultats entre les cultures traitées par le RE et les cultures témoins. La pureté des cultures a été vérifiée en les soumettant à la réaction à la leucine aminopeptidase (LAP) voir article de NACHLAS et coll. cité supra). On a trouvé que cette réaction était négative,alors qu'elle est positive dans les cellules non épidermiques. Préparation des étalements chromosomiques Les cultures pour études cytogénétiques ont été faites sur lamelles de verre dans des tubes de Leighton. Les suspensions de kératinocytes ont été ajustées à une concentration de 400.000 cellules par ml dans du milieu complet et réparties à raison de 2ml par tube dans des tubes de Leighton dont le méplat contenait une lamelle de verre. Les tubes ont été ensuite bouchés et placés à l'étuve à 370C horizontalement. Le milieu est renouvelé après 48 heures et après 5 jours de culture. Au 8ème jour d'incubation, 401i (400 gg de protéines) de RE sont ajoutés dans les tubes. Le 9ème jour,le milieu est rejeté et remplacé par du milieu frais;40Ql de RE sont encore ajoutés. Huit heures après la dernière addition de RE, les cultures sont traitées par un sel de dicolcine dispo- nible sous la dénomination Colcemid (Gibco) à une concentra- tion finale de 0,25.106M durant 15 heures. Les mitoses stimulées par le RE et bloquées en méta- phases par l'action de la "Colcemid" sont préparées sur lamelle. Après 15 heures de contact avec la "Colcemid",les lamelles sont rincées au PBS retirées des tubes et placées dans des boîtes de Petri de 6 cm de diamètre (Falcon 1007), afin de suivre l'évolution des cellules au cours du traite- ment sous un microscope inversé à contraste de phase. Les lamelles sont recouvertes par 2ml de milieu hypo- tonique,ayant la composition ci-après: KC1 0,075 M: 25 vol. H20 distillée: 25 vol. Hyaluronidase injectable (Choay): 3 vol. Cette solution est préchauffée 30minutes à 37 C. Les boîtes contenant les lamelles sont placées à l'étuve à 37 C pendant minutes. La hyaluronidase permet au milieu aqueux de pénétrer à l'intérieur des cellules en mitose et de les faire gonfler. Les boîtes sont alors retirées de l'étuve et le fixateur suivant est ajouté: alcool méthylique absolu: 3 volumes acide acétique glacial: 1 volume, Cette solution est ajoutée goutte à goutte, très lentement pour atteindre dans les boltessen une heure environ, la dilu- tion 1:1 dans le milieu hypotonique. Les boîtes sont alors replacées à l'étuve à 37 0C pendant 10 minutes. Le mélange milieu hypotonique-fixateur est alors retiré des boîtes et remplacé par du fixateur pur pendant 20 minutes. Cette fixation très lente permet à la solution alcoo- lique de remplacer peu à peu l'eau à l'intérieur des cellules gonflées. Les lamelles sont sorties des boîtes,posées sur un portoir métallique,séchées à l'étuve à 37 C pendant une heure et colorées au Giemsa pendant 10 minutes. Giemsa (RAL)4 volumes Tampon phosphate Sorensen, pH 6,7: 4 volumes H20 distillée: 92 volumes. Pour obtenir des bandes R sur les préparations,on a utilisé la technique de dénaturation par la chaleur (DUTRILLAUX et coll.1972,CHARPENTIER et coll.1972). Pour cela,les lamelles non colorées sont mises dans un tube contenant une solution saline de Earle pH 6,5 à 87 C. Les tubes sont maintenus au bain-marie à cette température pendant un temps variant de manière inversement proporltonnelle à l'âge des préparations. Pour des préparations de i5 jours,le temps est d'une trentaine de minutes. Les lamelles sont alors sorties des tubes,rincées à l'eau distillée et colorées avec le colorant de Giemsa utilisé précédemment. Après 10 minutes de coloration,les lamelles sont rin- cées à l'eau déminéralisée,essorées entre deux papiers-filtres, et laissées à sécher à l'air pendant deux heures. Le montage des lamelles est fait au DPX (GURR),sur des la- mes d'histologie. Préparation des échanges de chromatides La préparation des cultures et la mise en route sont identiques à celles décrites pour les préparations chromoso- miques. Au Sème jour,le milieu de culture est rejeté et remplacé par du milieu frais contenant de la bromodeoxyuri- dine (BUdR, Sigma),à une concentration finale de 0,5 jg par ml. Quarante gl (400gg de protéines)de RE sont ajoutés dans chaque tube et ceux-ci sont remis à l'étuve à 37 C.Le 9ème jour,le milieu est rejeté et remplacé par du milieu contenmt aussi du BUdR à la -même concentration. La même quantité de RE est ajoutée. Dix huit heures après,les cultu- res sont traitées par la Colcemid (Gibco): 0,25.106 M comme précédemment, et ceci pendant 15 heures. La préparation des métaphases est identique à celle décrite précédemment. Le BUdI est incorporé pendant deux cycles consécutifs à la place de la thymidine dans l'ADN d'une majorité de oellules,stimulées par le RE.. Les chromosomes métaphasiques, après le deuxième cycle de replication, présentent une chromatide bisubstituée par le BUdR et une chromatide mono- substituée. Cette dernière fixe leiluorochrome Hoechst 33258 que l'on remplace ensuite par du Giemsa. La technique utilisée est dérivée de celle de DE WEERD-KASTELEIN et coll. (1977), elle-même adaptée de la méthode décrite par PERRY et col.(1974). Les lamelles sont plongées dans une solution de fluorochrome Hoechst 33258 (Hoechst) à 0,5 gg par ml de PBS pendant 15 minutes. Elles sont ensuite placées,cellu- les au-dessus,dans des boîtes de Pétri de 6 cm de diamètre contenant unpapier filtre humecté de PBS,sous une lampe à U.V. (254 nm)pendant une nuit. Les cellules sont alors placées au bain-marie à 61 C pendant une heure, dans dés tubes contenant du tampon: KCl: O 3 M Citrate de sodium: 0,03 M Les lamelles sont alors rincées à l'eau distillée,colorées au Giemsa,séchées et montées comme précédemment. Les observations et comptages de chromosomes et d'échanges de chromatides ont été faits avec un microscope orthoplan à objectif à immersion. EXEMPLE 1 Augmentation de la densité cellulaire et de la surface couverte par des kératinocytes épidermiques humains adultes après traitement par l'extrait rétinien (RE). Les résultats de cet exemple sont illustrés à la figure 1. Dans cette expérience représentative,un specimen de 2 à 3 cm2 de peau a été prélevé dans la région thoraci- que d'une femme de 30 ans. Ce spécimen a été recoupé en morceaux amincis de 2 à 4 mm2. Ces fragments ont été incu- bés une nuit dans de la trypsine à 0,25 % dans du tampon salin au phosphate (PBS), à + 4 C. Une fois dissociés,l'épi- derme et le derme ont été doucement agités dans du PBS pour récolter les cellules. Après filtration à travers deux épaisseurs de gaze,les cellules ont été sédimentées à 800 t. p.m. pendant 10 minutes. Le milieu de culture (T.C.X.) con- sistait en la modification de Dulbecco du MEM de Eagle, en tampon Hépès, supplémenté avec 20% de sérum de veau foetal. Les plaques de culture de tissu (COSTAR-3524) à 24 puits (2 cm2 par puits)comme il est montré sur la figure l,ont été ensemencées à des concentrations cellulaires variées. Pour la préparation du RE on a utilisé des rétines de bovins et on a opéré comme suit: Les yeux de boeufs sont prélevés à l'abattoir quel- ques instants après la mort de l'animal. Ils sdnt alors transportés sur la glace et la dissection a lieu dans les 3 heures qui suivent. Après nettoyage du globe par un jet d'alcool à 70%,1a cornée est découpée et le cristallin, l'iris,et l'humeur vitrée sont recueillis dans des réci- pients séparés,sur glace. La rétine est alors retirée à l'aide d'une pince et lavée dans une solution isotonique tampon neutre. Puis les rétines sont rassemblées. Toutes les opérations consécutives d'extraction du facteur RE sont réalisées à froid. 50 rétines sont rassemblées dans 50 ml de tampon PBS, puis elles sont broyées dans un Potter. Une première centri- fugation a lieu à 11l 000 tours/minute pendant 30 minutes. Le surnageant est alors directement filtré sur une succession de filtres "millipore" avec des diamètres de pores décrois- sants: 3 A, 1,2g, 0,45;, 0,22 gle dernier amenant la stérilisation. Le facteur RE est conservé congelé. On peut obtenir également l'extrait RE avec des rende- ments analogues en opérant: 1 ) une centrifugation supplémentaire à 100l. OOOg avant les filtrations. 2 )une dialyse contre le tampon PBS pendant une nuit suivie de la filtration pour stérilisation. Lat solution protéique a été ajustée à 5 mg par ml en PBS. Le contenu protéique a été mesuré selon la technique décrite par BRADFORD M.M. Analytical Biochem.72, 248-254 (1976) en utilisant la sérum albumine bovine (Fraction V) comme standard.20O1l par puits (0,5 ml de TCM) ont été ajoutés chaque jour,de la manière suivante: A 24 heures,le RE a été ajouté,le TCM a été enlevé le 2ème jour et remplacé par du TCM + RE. Au jour 3, le RE a été ajouté sans change- ment du TCM. Au jour 4,le TCM a été enlevé et remplacé par du TCM frais + RE. Aux jours 5 et 7,les cultures ont été traitées comme au jour 3,aux jours 6 et 8,comme au jour 4. Les témoins ont été traités de façon similaire mais le RE a été omis. La figure i montre une coloration au Giemsa de culture 8 jours après l'ensememencement. De gauche à droite,les cellules ont été ensemencées à a) 5 x 104 b) 105 c) 2 x 105 d) 4 x 105 e) 6 x 105 f) 8 x 105 cellules par puits. L'effet du RE sur la surface couverte par les cellules épidermiques est clairement visible dans les rangées a), b) et c). L'augmentation b la densité cellu- laire peut se voir aussi dans les rangées c), d), e) et f). EXEMPLE 2- Augmentation de l'activité mitotique résultant du traitement par le RE Les résultats de cet exemple sont illustrés à la figure 2. Les figures mitotiques ont été comptées dans les cul- tures montrées sur la figure 1. Pour ce faire, 5 champs micros- copiques ont été examinés au grossissement 250,dans chaque puits. Sur la figure 2,le nombre de figures mitotiques par champ microscopique (ordonnées)est porté en fonction de la concentration de cellules ensemencées par puits (abcisses). Chaque point de la courbe représente la valeur moyenne de 12 comptes (3 champs microscopiques x 4 puits). On peut voir que,dans les cultures témoins,environ 3 figures mitoti- ques peuvent être détectées dans un champ microscopique pour une concentration d'ensemencement de 4, 6, 4 et 8 x 105. Dans les cultures traitées par le RE,le nombre de figures mitotiques est au moins doublé. EXEMPLE 3- Accumulation de mitoses pour caryotypes Les résultats de cet exemple sont illustrés à la figu- re 3. Pour les caryotypes,des speciments de peau de 6 sujets adultes ont été prélevés. Les suspensions cellulaires ont été préparées comme il est indiqué à l'exemple l,ajustées à 2 x 105 cellules par ml dans du TCM. On a ensemencé 2 ml de ces suspensions sur des lamelles de 11 x 22 mm (environ 2 cm2)en verre dans des tubes de Leighton. Les Sème et 9ème jours,lOOjg (équivalent protéine) par ml de RE ont été ajoutés dans chaque tube.12 heures après la 2ème addition de RE,les cellules ont été traitées à la Colcemid (0,25 x 10 M pendant heures pour accumuler les métaphases. Les lamelles ont été rincées au PBS et transférées dans des boîtes à moitié remplies de solution hypotonique (KCi 0,075 M; H20 1:1) à laquelle était ajouté 6% de hyaluronidase (Choay). Après minutes à + 37 C, le fixateur (méthanol,acide acétique, 3:1) a été ajouté à la solution hypotonique,très lentement, goutte à goutte,pour atteindre une dilution 1:1 en environ 1 heure. Ce mélange a été remplacé après 10 minutes à + 37 C par du fixateur pur pendant 30 minutes à la température ambiante. La figure 3 est une vue en contraste de phase de 6 mitoses gonflées dans un seul champ,après addition des premières gouttes de fixateur. Après la fixation,les lamelles ont été séchées à + 37 C pendant une heure,colo- rées au Giemsa,et montées au DPX (GLtRR) EXEMPLE 4 Echanges de chromatides soeurs sur kératinocytes humains adultes Les résultats de cet exemple sont illustrés à la figure 4. Des cultures de kératinocytes humains adultes (4 expériences)ont été débutées à la concentration de 4 x 105 cellules par lamelle de verre en tube de Leighton,comme dans l'exemple 3. Les cellules ont été cultivées pendai.t 8 jomrs dans du TCM normal,comme dans l'exemple l,sans RE. Le 8ème jour,le TCX a été rejeté et remplacé par du TCM con- tenant du BUdR (concentration finale 0,2 g par ml).lOO g (équivalent protéine) de RE ont été ajoutés. Après 24 heures à + 37 C; le milieu a été rejeté et remplacé par du TCM frais contenant la même quantité de BUdR et de RE respective- ment. Les cellules ont été incubées ainsi pendant 36 heures. Après traitement par la Colcemid,la solution hypotonique et le fixateur, comme il est indiqué sur la figure 3,1es cultures ont été colorées au Hoechst 33 358 (0,5 gg par ml en PBS) pendant 15 minutes. Ruis,après une exposition d'une nuit à la lumière U.V. à 254 nm,les lamelles ont été traitées au SSC x 2 (0,3 M KC1 0,03 M citrate de sodiumi + 61 C pendant une heure (DE WEERD-KASTELEIN E.A., KEIZER W., RAINALDI G. et BOOTSMA D. Mutat. Res. 45 253-261.(1977). Les cellules ont été rincées à l'eau et colorées au Giemsa à 4% en tampon phosphate, pH 6,7 pendant 10 minutes. La figure 4 a été prise à l'objectif x 100 à immersion, sur une pellicule Kodak Microfile. Les flèches indiquent les échanges de chromatides soeurs spontanés. EXEMPLE 5 Comparaison de l'activité du RE et d'un autre facteur de croissance (FGF). L'exemple ci-après a pour but de montrer la différence d'activité sur la croissance des myoblastes du RE et du facteur FGF (voir article de D. Gospodarowicz cité supra). Des myoblastes préparés par dissociation de muscles de membres de veau sont ensemencés dans des boîtes de Pétri. Le milieu de culture ne contient que 0,5% de sérumPendant 2 jours,les cellules recoivent 501 de RE ou 10 ng de FGF. Le nombre de cellules est déterminé directement sur la moitié des boîtes;sur l'autre moitié, l'incorporation de thymidine radioactive est mesurée après 4 heures d'incubation.Les résultats montrent que le témoin contient 40 000 cellules et 8 100 Cpm,alors que l'échantillon traité au RE contient 120. 000 cellules et 41 000 Cpm et l'échantillon traité au FGF 40 000 cellules et 25 000 Cpm. Il y a donc une forte stimulation due au RE. Le FGF, dans ce cas,ne modifie pas le nombre. de cellules par rapport au témoin. REVENDICATIONS 1. Procédé pour stimuler la croissance des cellules d'épiderme,en particulier adulte,caractérisé en ce qu'on met en contact les cellules de l'épiderme avec un extrait (RE) salin aqueux de tissu oculaire. 2. Procédé selon la revendication l,caractérisé en ce que l'agent actif est extrait de tissus de l'oeil tels que la choroide,l'iris et l'humeur vitrée. 3.Procédé selon l'une des revendications 1 ou 2, caractérisé en ce que l'extrait RE est obtenu par traitement de tissus oculaires de bovins par une solution saline aqueuse tamponnée à un pH voisin de 7,2. 4. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisé en ce qu'on utilise 50 à 400gg,en protéine totale, d'extrait par ml de culture de cellules épidermiques, des doses de 50 à lO0g étant préférées. 5. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 4,caractérisé en ce qu'on cultive des cellules d'épiderme humain. 6. Application du procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 5 à l'étude des chromosomes de la cellule de l'épiderme humain,en particulier pour la détection des anomalies chromosomiques naturelles ou induites. 7. Application selon la revendication 6 pour l'évalua- tion des échanges de chromatides soeurs (SCE) dans des cultures in vitro de kératinocytes humains adultes. 8. Application selon l'une des revendications 6 ou 7, caractérisée en ce qu'on effectue une mise en culture préala- ble normale des cellules épidermiques en l'absence de facteur de croissance RE,en ce que,après une période comprise entre 5 et 10 jours, par exemple au bout de 8 jours,on introduit dans la culture une quantité efficace de RE,et en ce que,un ou deux jours après,on introduit une autre quantité efficace de RE, en vue d'obtenir une seconde replication des cellules. 9. Application selon l'une des revendications 6 ou 7, caractérisée en ce qu'on effectue la mise en culture des cellules épidermiques en introduisantà l'origine,une quantité efficace de RE,et en ce qu'on arrête ensuite la culture pour 2 4 6 1002 permettre la synchronisation des cellules. 10. Application du procédé selon l'une quelconque des revendications7à 5 à la fabrication de greffes,et spé- cialement d'auto-greffes,utilisables chez 1'homme,par exemple en vue du traitement des br lés. 11. Application selon la revendication 10 intégrée à une technique de greffage consistant à prélever de petits fragments de peau en vue de l'auto-greffe ultérieure,à fractionner le greffon par des moyens enzymatiques 1 à 2 1O semaines avant la culture,à faire proliférer les cellules épidermiques cultivées sur un support constitué de lambeaux minces de peau humaine ou de peau de porc,l'extrait RE étant ajouté en quantité efficace en vue d'une culture accélérée des cellules épidermiques,et à réaliser la greffe de manière classique. 12. Greffon obtenu dans l'application _ selon l'une des revendications 10. ou 11. 13. Produits cosmétiques faisant application du procédp selon l'une quelconque des revendications 1 à 5. 14.Composition cosmétique caractérisée en ce qu'elle comprend,à titre d'agent actif,l'extrait RE. 15.Composition selon la revendication 14,présentée en vue de l'application par voie locale sur la partie du corps à traiter,le véhicule étant adapté à l'application sur la peau ou sur les cheveux. 16. Application du procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 5 à la culture de longue durée des cellules épidermiques. 17. Application selon la revendication 16 dans laquel- le on cultive directement les cellules sur un substrat,par exemple plastique,en présence d'une quantité efficace de l'extrait RE,et sans adjonction d'autres cellules.