Brevet FR3159173A1 — publié le 20250815

L’invention concerne un kit pour lyse d’éléments organiques d’un échantillon biologique par micro-ondes comprenant : - une capsule (1) agencée pour recevoir un échantillon biologique, - au moins une paire d’électrodes (31, 33), et - un socle (29) agencé pour maintenir les électrodes (31, 33) de chaque paire d’électrodes (31, 33) dans des positions relatives respectives dans lesquelles les électrodes (31, 33) définissent un logement (35) propre à recevoir de manière détachable une portion de la capsule (1), le socle (29) et l’au moins une paire d’électrodes (31, 33) formant alors ensemble un support de lyse (3). Le support de lyse (3) permet d’établir, en présence d’une source micro-onde extérieure émettant des micro-ondes à une fréquence comprise entre 0,3 et 30 GHz, un champ électrique présentant une force électrique comprise entre 2 et 100 kV.m -1 au sein de la portion de la capsule (1) reçue dans le logement (35). [Fig. 1] Kit et procédé pour lyse d’éléments organiques d’un échantillon biologique par micro-ondes Le domaine de l’invention se rapporte à la lyse d’éléments organiques d’un échantillon biologique par micro-ondes, notamment aux fins de test par amplification des acides nucléiques. La biologie moléculaire est une branche de la biologie qui étudie les propriétés des êtres vivants par la structure et les interactions des molécules qui les composent, et notamment des macromolécules biologiques telles que les protéines, l’acide désoxyribonucléique (ADN) ou l’acide ribonucléique (ARN). Parmi les techniques de biologie nucléaire, l’amplification en chaîne par polymérase (plus connue sous le sigle anglophone PCR pour « polymerase chain reaction ») permet de produire, in vitro , un grand nombre de copies d’un fragment d’ADN à partir d’un échantillon biologique peu abondant. La PCR consiste tout d’abord à mélanger l’échantillon biologique avec des nucléotides, des amorces d’ADN spécifiques au fragment cible et une ADN polymérase, c’est-à-dire une enzyme capable de reconnaître les amorces d’ADN et d’assembler les nucléotides pour recopier le fragment cible ; le mélange obtenu est ensuite soumis à des variations rapides de température. En particulier, le mélange est soumis à plusieurs cycles comprenant chacun trois étapes : la dénaturation (environ 94-95°C) pour séparer les brins d’ADN, l’hybridation (à une température variable, typiquement comprise entre 40 et 65°C) pour fixer des amorces aux fragments d’ADN et, enfin, l’élongation (environ 72°C) pour fixer l’ADN polymérase aux amorces d’ADN et assembler les nucléotides. La PCR facilite la détection de matériel génétique à partir de faibles quantités d’échantillons biologiques, ce qui présente un avantage dans un contexte médical, par exemple pour l’établissement d’un diagnostic. À titre d’exemple, un test PCR peut être utilisé comme test diagnostique du SARS-CoV-2, qui est le virus responsable de la Covid-19. Les techniques d’amplification des acides nucléiques telles que la PCR requièrent souvent l’extraction préalable de l’ADN de l’échantillon biologique à analyser. Pour ce faire, il est connu d’avoir recours à une lyse, c’est-à-dire la destruction ou la décomposition d’éléments organiques tels que des tissus, des cellules ou des micro-organismes, et plus particulièrement leurs membranes qui retiennent les macromolécules, par des agents physiques, chimiques ou biologiques. D’une manière générale, la lyse permet de libérer les espèces chimiques recherchées – ou analytes – des éléments organiques. Parallèlement, l’essor récent des tests médicaux au chevet du patient (plus connus sous le sigle anglophone POCT pour « point-of-care tests ») et des autotests repose sur le développement de technologies simples d’utilisation, peu encombrantes et rapides. Dans le cadre de ce développement, plusieurs procédés de lyse ont ainsi été envisagés et testés. La lyse par choc thermique consiste à répéter des cycles de congélation/décongélation des échantillons biologiques pour fragiliser puis détruire la membrane des cellules. Une telle lyse présente toutefois l’inconvénient d’être lente et d’être peu efficace pour certaines cellules dont la membrane est particulièrement résistante telles que les spores ou les bactéries Gram positives. La lyse chimique consiste à utiliser un détergent ou un chaotrope pour détruire la membrane des cellules sans pour autant dénaturer ou dégrader les acides nucléiques. Toutefois, là encore, une telle lyse est à la fois lente et peu efficace pour les cellules les plus résistantes. La lyse mécanique consiste à utiliser des techniques telles que la sonication, l’homogénéisation ou encore le broyage cellulaire pour rompre la membrane des cellules. En particulier, un procédé appelé « beat beating » consiste à utiliser des broyeurs-homogénéisateurs à billes, lesquels impliquent des billes de broyage, qui peuvent être en céramique, en verre ou en acier inoxydable, logées dans des tubes à billes. Une telle lyse est toutefois complexe à réaliser et nécessite des équipements volumineux. Enfin, la lyse par micro-ondes consiste à exposer les échantillons biologiques à des micro-ondes pour détruire la membrane des cellules. Une telle lyse a ceci de désavantageux qu’elle ne fonctionne pas avec des échantillons liquides présentant une conductivité trop faible et, par ailleurs, il est nécessaire de contrôler avec précision la durée de l’exposition aux micro-ondes ainsi que la fréquence de celles-ci pour éviter la dénaturation des acides nucléiques. La lyse par micro-ondes est néanmoins considérée comme prometteuse et, par conséquent, des innovations ont été proposées pour la rendre plus efficace. Une solution possible prévoit par exemple d’utiliser un « consommable », c’est-à-dire un contenant destiné à être dégradé par l’usage et donc à être remplacé, pour y placer l’échantillon biologique. Un tel consommable intègre des électrodes pour focaliser les micro-ondes sur l’échantillon biologique, lequel se trouve alors pris dans un champ électrique suffisamment puissant pour détruire la membrane des cellules. À titre d’exemples, les brevets américains US 9,500,590 B2 et US 10,294,451 B2 proposent d’utiliser un substrat sur lequel une première et une deuxième structures métalliques triangulaires sont positionnées et orientées de telle sorte qu’un sommet de la première structure métallique triangulaire est vis-à-vis d’un sommet de la deuxième structure métallique triangulaire. La région du substrat comprise entre les deux sommets forme une zone de réaction au niveau de laquelle une lyse par micro-ondes peut être réalisée. Une telle solution présente toutefois de nombreux inconvénients : les métaux utilisés pour fabriquer les électrodes libèrent des substances qui sont de nature à inhiber la PCR ultérieure ; seul la région confinée par les électrodes est concernée par la lyse, ce qui représente un faible volume, notamment pour un échantillon liquide ; et, en outre, un consommable intégrant des électrodes est difficile à produire et est coûteux pour l’utilisateur. Il est connu, pour surmonter ces difficultés, d’utiliser une filtration dimensionnelle pour confiner l’échantillon biologique dans un volume réduit. Le filtre utilisé est toutefois bien souvent surdimensionné et son usage nécessite plusieurs manipulations complexes. L’utilisation d’une colonne d’extraction-purification comprenant un filtre de silice n’est pas non plus envisageable étant donné qu’elle n’empêche pas la libération des substances inhibitrices de la PCR, qu’elle est complexe à utiliser et, enfin, qu’elle requiert des solutions pour désorber les acides nucléiques adsorbés par le filtre de silice. La présente invention vient améliorer la situation. À ce titre, l’invention concerne un kit pour lyse d’éléments organiques d’un échantillon biologique par micro-ondes comprenant : - une capsule agencée pour recevoir un échantillon biologique et présentant une paroi dont l’épaisseur est comprise entre 0,1 et 5 mm, - au moins une paire d’électrodes, et - un socle agencé pour maintenir les électrodes de chaque paire d’électrodes dans des positions relatives respectives dans lesquelles les électrodes sont séparées d’une distance comprise entre 0,3 et 20 mm de manière à définir un logement propre à recevoir de manière détachable une portion de la capsule, le socle et l’au moins une paire d’électrodes formant alors ensemble un support de lyse. Le support de lyse permet d’établir, en présence d’une source micro-onde extérieure émettant des micro-ondes à une fréquence comprise entre 0,3 et 30 GHz, un champ électrique présentant une force électrique comprise entre 2 et 100 kV.m -1 au sein de la portion de la capsule lorsque celle-ci est reçue dans le logement. Dans un ou plusieurs modes de réalisation, la capsule contient un électrolyte ayant une conductivité comprise entre 10 -19 S.m -1 et 10 3 S.m -1 . Avantageusement, l’électrolyte a une conductivité comprise entre 1 S.m -1 et 10 3 S.m -1 . Dans un ou plusieurs modes de réalisation, la capsule présente une paroi dont l’épaisseur est comprise entre 0,5 et 1,5 mm. Dans un ou plusieurs modes de réalisation, le socle est agencé pour maintenir les électrodes de chaque paire d’électrodes dans des positions relatives respectives dans lesquelles les électrodes sont séparées d’une distance comprise entre 0,5 et 10 mm. Dans un ou plusieurs modes de réalisation, les électrodes de chaque paire d’électrodes présentent une forme allongée s’étendant selon une direction longitudinale respective, et le socle est agencé pour maintenir les électrodes de chaque paire d’électrodes dans des positions relatives respectives dans lesquelles les directions longitudinales respectives des électrodes forment un angle compris entre 5° et 180°. Dans un ou plusieurs modes de réalisation, le socle est agencé pour maintenir les électrodes de chaque paire d’électrodes dans des positions relatives respectives dans lesquelles les directions longitudinales respectives des électrodes forment un angle sensiblement égal à 180°. Dans un ou plusieurs modes de réalisation, le kit comprend en outre une pluralité d’entretoises, chaque entretoise étant agencée pour solidariser une électrode de l’au moins une paire d’électrodes et le socle, l’électrode et le socle solidarisés étant séparés par une distance comprise entre 0,1 et 80 mm, et de préférence comprise entre 0,1 et 20 mm. Dans un ou plusieurs modes de réalisation, le support de lyse permet d’établir, en présence d’une source micro-onde extérieure émettant des micro-ondes à une fréquence comprise entre 0,3 et 30 GHz, un champ électrique présentant une force électrique comprise entre 5 et 50 kV.m -1 au sein de la portion de la capsule lorsque celle-ci est reçue dans le logement. L’invention concerne aussi un procédé de lyse d’éléments organiques d’un échantillon biologique par micro-ondes mis en œuvre au moyen du kit décrit précédemment. Le procédé comprend les opérations suivantes : - déposer un échantillon biologique dans la capsule, - assembler le socle et l’au moins une paire d’électrodes pour former le support de lyse, - placer la portion de capsule dans le logement, et - exposer le support de lyse à une source micro-onde extérieure émettant des micro-ondes à une fréquence comprise entre 0,3 et 30 GHz. D’autres caractéristiques, détails et avantages apparaîtront à la lecture de la description détaillée ci-après, et à l’analyse des dessins annexés sur lesquels : FIG. 1 illustre une vue en perspective d’une capsule et d’un support de lyse ; FIG. 2 illustre une vue en coupe d’un exemple de capsule fermée par un bouchon ; FIG. 3 illustre le bouchon de la capsule de la FIG. 2 ; FIG. 4 illustre une vue de côté d’une paire d’électrodes définissant un logement propre à recevoir une capsule ; FIG. 5 illustre une vue de dessus de la paire d’électrodes de la FIG. 4 ; FIG. 6 illustre une vue en coupe d’une capsule et d’un support de lyse ; FIG. 7 illustre une configuration dans laquelle le support de lyse comprend une seule paire d’électrodes et une configuration dans laquelle le support de lyse comprend plusieurs paires d’électrodes ; FIG. 8 illustre un procédé de lyse d’éléments organiques d’un échantillon biologique par micro-ondes mis en œuvre avec la capsule et le support de lyse de la FIG. 1 ; FIG. 9 illustre un procédé de lyse d’éléments organiques d’un échantillon biologique par micro-ondes mis en œuvre avec la capsule et le support de lyse de la FIG. 6 ; FIG. 10 montre les résultats de différents tests PCR, dont l’un réalisé après une lyse mise en œuvre avec le support de lyse ; FIG. 11 est une illustration schématique des impédances induites par la capsule et le support de lyse ; et FIG. 12 est une photographie d’une capsule et d’un support de lyse. La FIG. 1 illustre une capsule 1 et un support de lyse 3. Typiquement, la capsule 1 et le support de lyse 3 se présentent sous la forme de pièces détachées destinées à être assemblées, ce qui est le cas sur la FIG. 1 où la capsule 1 est reçue dans le support de lyse 3. Il doit être noté que la FIG. 1 est dotée d’un système d’axes orthogonaux X, Y et Z. Il en est de même pour d’autres figures décrites plus en détail dans la suite de la description. La capsule 1 est un contenant agencé pour recevoir un échantillon biologique. Un tel échantillon biologique comprend des éléments organiques tels que des tissus, des cellules ou des micro-organismes destinés à faire l’objet d’une lyse par micro-ondes. L’échantillon biologique peut être liquide, solide ou prendre la forme d’un gel. Une lyse par micro-ondes consiste à exposer l’échantillon biologique à des micro-ondes afin de détruire ou de décomposer les éléments organiques qui y sont présents. En particulier, la lyse peut être utilisée pour détruire la membrane des cellules de l’échantillon biologique de manière à en extraire du matériel génétique, notamment l’ADN et l’ARN, pour réaliser une PCR dans le cadre d’un test diagnostique. La capsule 1 peut contenir un électrolyte. La propriété de l’électrolyte de conduire le courant électrique favorise l’établissement d’un champ électrique au sein de la capsule 1, et donc la lyse des éléments organiques de l’échantillon biologique. À cette fin, la capsule 1 est agencée pour être reçue au moins en partie et de manière détachable dans le support de lyse 3. Typiquement, la capsule 1 est un contenant jetable – ou consommable –, c’est-à-dire un contenant destiné à être utilisé un nombre de fois limité. La capsule 1 peut par exemple être destinée à n’être utilisée qu’une seule fois, c’est-à-dire pour une seule lyse. Dans l’exemple de la FIG. 1 , la capsule 1 prend la forme d’un tube fermé par un bouchon. Toutefois, la capsule 1 peut prendre toute forme présentant une portion apte à être reçue de manière détachable dans le support de lyse 3. À ce titre, la FIG. 2 illustre un exemple de capsule 1 fermée par un bouchon 5. Une telle capsule 1 est adaptée pour recevoir un échantillon biologique liquide. La présente invention porte essentiellement sur le support de lyse 3. Par conséquent, la capsule 1 représentée sur la FIG. 2 est décrite ci-après de manière succincte. La capsule 1 comprend un réservoir 7, une ouverture d’entrée 9, une chambre de collecte 11, une couche absorbante 13, un filtre 15, un anneau de serrage 17, une ouverture de sortie 19 et un canal d’évacuation 21. Le réservoir 7 – partiellement représenté sur la FIG. 2 – est agencé pour recevoir l’échantillon biologique liquide. Le réservoir 7 est connecté de manière fluidique à la chambre de collecte 11 par l’ouverture d’entrée 9. La capsule 1 et le réservoir 7 peuvent être des pièces détachées, auquel cas la capsule 1 et le réservoir 7 doivent être assemblés pour permettre à l’échantillon biologique liquide de passer du réservoir 7 à la capsule 1, et plus précisément à la chambre de collecte 11. Alternativement, il est possible de déposer l’échantillon biologique liquide directement dans la chambre de collecte 11 en utilisant un instrument de distribution tel qu’une pipette ou une micropipette. La couche absorbante 13 et le filtre 15 sont placés au contact l’un de l’autre dans la chambre de collecte 11. Dans l’exemple de la FIG. 2 , le contact entre la couche absorbante 13 et le filtre 15 est renforcé grâce à l’anneau de serrage 17 dont la paroi périphérique externe est en contact avec la paroi périphérique interne de la chambre de collecte 9. L’anneau de serrage 17 est positionné à l’intérieur de la chambre de collecte 11 de manière à exercer une pression sur la paroi périphérique interne de celle-ci. Comme mentionné précédemment, la capsule 1 peut contenir un électrolyte pour favoriser l’établissement d’un champ électrique. L’électrolyte peut ici être absorbé par la couche absorbante 13. La couche absorbante 13 peut être réalisée à partir d’un matériau hydrophile ou d’un matériau en cellulose. Une telle couche absorbante 13 est capable d’accumuler une volume d’électrolyte compris typiquement entre 1 et 1000 microlitres (μL). L’électrolyte peut être mélangé avec l’échantillon biologique liquide dans le réservoir 7. Le filtre 15 permet à la fois de filtrer l’échantillon biologique liquide et d’évacuer le produit de la lyse – ou lysat – de la chambre de collecte 11. Le filtre 15 peut prendre la forme d’un membrane, par exemple en polyéthersulfone, dont les pores sont d’une dimension généralement comprise entre 0,01 et 5 micromètres (μm). Le filtre 15 est interposé entre la couche absorbante 13 et l’ouverture de sortie 19, ce qui permet de faire passer l’échantillon biologique liquide de la chambre de collecte 11 au canal d’évacuation 21 par l’ouverture de sortie 19. La capsule 1 a par exemple un corps flexible qu’il est possible de comprimer pour réduire le volume interne de la chambre de collecte 11 de manière à évacuer l’échantillon biologique liquide de la chambre de collecte 11 par la couche absorbante 13 et le filtre 15. D’autres moyens tels qu’une pompe peuvent être utilisés. On comprend de ce qui précède que l’évacuation de l’échantillon biologique liquide permet de récupérer le lysat contenu dans la chambre de collecte 11. Le bouchon 5 est agencé pour récupérer le lysat, notamment aux fins de test par amplification des acides nucléiques. Le bouchon 5 – isolé de la capsule 1 – est illustré sur la FIG. 3 . Le bouchon 5 présente un corps 23 apte à être monté sur la capsule 1. Par exemple, la paroi interne du corps 23 est taraudée et le corps de la capsule 1 présente un filet externe complémentaire de telle sorte que le bouchon 5 puisse être vissé sur la capsule 1. Le corps 23 est surmonté d’un obturateur 25 qui permet de sceller le canal d’évacuation 21 lorsque le bouchon 5 est monté sur la capsule 1. Le corps 23 présente deux passages 27 vis-à-vis l’un de l’autre pour recevoir respectivement des électrodes 31 et 33. Comme illustré sur la FIG. 2 , les électrodes 31 et 33 sont ainsi au plus près de la chambre de collecte 11 et donc de l’échantillon biologique liquide. Il est de nouveau fait référence ci-après à la FIG. 1 sur laquelle une portion de la capsule 1 est reçue dans le support de lyse 3. Le support de lyse 3 est agencé pour recevoir la capsule 3 aux fins de réalisation d’une lyse des éléments organiques de l’échantillon biologique contenu dans la capsule 1 par micro-ondes. Le support de lyse 3 comprend un socle 29 et au moins une paire d’électrodes. Dans l’exemple de la FIG. 1 , le support de lyse 3 comprend une seule paire d’électrodes, à savoir la paire d’électrodes formée par une première électrode 31 et une deuxième électrode 33. Toutefois, le support de lyse 3 peut comprendre plusieurs paires d’électrodes. Par souci de simplification, les mêmes signes de référence 31 et 33 sont utilisés sur la FIG. 1 et sur la FIG. 2 pour désigner les électrodes de la paire d’électrodes. Les électrodes sont formées à partir d’un matériau métallique, par exemple un métal tel que l’or (Au), l’argent (Ag), le platine (Pt), le rhodium (Rh), le palladium (Pd), l’aluminium (Al), le cuivre (Cu) ou encore un alliage. Il est également possible d’utiliser un autre matériau tel qu’un polymère recouvert d’un des métaux mentionné précédemment, lequel peut être déposé par pulvérisation, par évaporation sous vide ou par plaquage. Afin d’éviter les décharges électriques, et notamment les arcs électriques, les électrodes peuvent être traitées avec un procédé de passivation ou d’anodisation. Les électrodes peuvent avoir un revêtement en nitrure, par exemple le nitrure de silicium (Si 3 N 4 ), le nitrure de titane (TiN) ou encore le nitrure de tantale (TaN), en polytétrafluoroéthylène (PTFE), en résine époxy, en poyuréthane, en graphène ou en carbone de type diamant (plus connu sous le sigle anglophone DLC pour « diamond-like carbon »). Typiquement, le socle 29, la première électrode 31 et la deuxième électrode 33 se présentent sous la forme de pièces détachées destinées à être assemblées pour former le support de lyse 3. Le socle 29 est agencé pour maintenir les électrodes de chaque paire d’électrodes dans des positions relatives respectives dans lesquelles les électrodes définissent un logement propre à recevoir de manière détachable une portion de la capsule 3. Ainsi, dans l’exemple de la FIG. 1 , la première électrode 31 et la deuxième électrode 33 maintenues par le socle 29 définissent un logement 35. De même que les électrodes, le socle 29 peut être formé à partir d’un matériau métallique, par exemple un métal tel que l’or (Au), l’argent (Ag), le platine (Pt), le rhodium (Rh), le palladium (Pd), l’aluminium (Al), le cuivre (Cu) ou encore un alliage. Il est également possible d’utiliser un autre matériau tel qu’un polymère recouvert d’un des métaux mentionnés précédemment, lequel peut être déposé par pulvérisation, par évaporation sous vide ou par plaquage. La première électrode 31 et la deuxième électrode 33 présentent chacune une forme allongée s’étendant selon une direction longitudinale. Ainsi, dans l’exemple de la FIG. 1 , la première électrode 31 et la deuxième électrode 33 s’étendent toutes les deux selon la direction X. D’une manière générale, lorsque les électrodes d’une paire d’électrodes du support de lyse 3 présentent chacune une forme allongée et s’étendent selon une direction longitudinale, les directions longitudinales respectives de ces électrodes forment un angle compris entre 5° et 180°. Dans l’exemple de la FIG. 1 , la première électrode 31 et la deuxième électrode 33 sont vis-à-vis l’une de l’autre : leurs directions longitudinales respectives forment un angle de 180°. La première électrode 31 et la deuxième électrode 33 ont sensiblement la forme d'un pavé droit. Le socle 29 présente également une forme allongée, s’étend selon la direction X et a lui aussi sensiblement la forme d’un pavé droit. Plus particulièrement, la première électrode 31 et la deuxième électrode 33 présentent chacune une face ayant une forme complémentaire de la portion de la capsule 1 destinée à être reçue dans le logement 35. La FIG. 4 et la FIG. 5 illustrent des vues respectivement de côté et de haut de la première électrode 31 et de la deuxième électrode 33. La paire d’électrodes 31 et 33 est celle du support de lyse 3 de la FIG. 1 , donc de la configuration dans laquelle le logement 35 est propre à recevoir une capsule 1 prenant la forme d’un tube. Comme illustré sur la FIG. 4 , la première électrode 31 présente une face concave 37 qui peut être vue comme un congé reliant la face inférieure à la face supérieure de la première électrode 31 selon la direction Z. De même, la deuxième électrode 33 présente une face concave 39 qui peut être vue comme un congé reliant la face inférieure à la face supérieure de la deuxième électrode 33 selon la direction Z. Comme illustré sur la FIG. 5 , l’arrête entre la face concave 37 et la face supérieure de la première électrode 31 présente un rayon de courbure complémentaire de la portion tubulaire de la capsule 1 destinée à être reçue dans le logement 35. Une telle arrête prend typiquement la forme d’un arc de cercle. De même, l’arrête entre la face concave 39 et la face supérieure de la deuxième électrode 33 présente un rayon de courbure complémentaire de la portion tubulaire de la capsule 1 destinée à être reçue dans le logement 35. Une telle arrête prend, elle aussi, typiquement la forme d’un arc de cercle. La première électrode 31 et la deuxième électrode 33 sont maintenues par le socle 29 (non représenté sur la FIG. 4 et la FIG. 5 ) de telle sorte que la face concave 37 et la face concave 39 sont vis-à-vis l’une de l’autre. L’espacement inter-électrodes délimité selon la direction X par la face concave 37 et la face concave 39 définit le logement 35. La FIG. 4 et la FIG. 5 montrent par ailleurs certaines dimensions remarquables de la capsule 1 et du support de lyse 3. Il doit toutefois être noté que ces figures ne sont pas à l’échelle. La distance d 1 correspond à la distance séparant chacune des électrodes 31 et 33 de la capsule 1. Dans l’exemple de la FIG. 4 et de la FIG. 5 , chacune des électrodes 31 et 33 présente une face complémentaire de la capsule 1 destinée à être reçue dans le logement 35, en l’occurrence la face concave 37 et la face concave 39. Du fait de la concavité, l’écart entre chacune des faces concaves 37 et 39 et la capsule 1 varie le long de l’axe Z, et la distance d 1 correspond alors à l’écart le plus faible. La distance d 1 doit être aussi faible que possible pour permettre le positionnement de la capsule 1, mais aussi pour renforcer le champ électrique à établir au sein de la capsule 1, et plus exactement de la portion de la capsule 1 reçue dans le logement 35. La distance d 1 est inférieure à 1 millimètre (mm). La distance d 2 correspond à l’épaisseur de la capsule 1, et plus exactement à l’épaisseur de la paroi de la capsule 1. La distance d 2 est comprise entre 0,1 et 5 millimètres (mm), et de préférence comprise entre 0,5 et 1,5 millimètres (mm). Enfin, la distance e correspond à la distance séparant deux électrodes d’une même paire d’électrodes – en l’occurrence la première électrode 31 et la deuxième électrode 33. Plus particulièrement, la distance e correspond ici à la distance entre la face concave 37 et la face concave 39, c’est-à-dire l’écart minimal entre les faces concaves 37 et 39. En d’autres termes, la distance e correspond à la longueur de l’espacement inter-électrodes, et donc du logement 35. La distance e présente une distance comprise entre 0,3 et 20 millimètres (mm), et de préférence comprise entre 0,5 et 10 millimètres (mm). Une telle distance e est suffisamment grande pour éviter la formation d’arcs électriques entre la première électrode 31 et la deuxième électrode 33. La FIG. 6 illustre un exemple d’assemblage du socle 29 et de la paire d’électrodes 31 et 33 pour former le support de lyse 3. Dans l’exemple de la FIG. 6 , la capsule 1 correspond à celle illustrée sur la FIG. 2 . Le réservoir 7, qui contient l’échantillon biologique liquide et, éventuellement, un électrolyte, est également présent. Il est à noter que, pour chacune de la première électrode 31 et de la deuxième électrode 33, l’extrémité la plus proche de la capsule 1 est formée par une face plane. Les électrodes 31 et 33 sont reçues par les passages 27 du bouchon 5 pour être au plus proche de l’échantillon biologique liquide. Il est également à noter qu’une source micro-onde extérieure 41 est représentée sur la FIG. 6 . Une telle représentation est schématique et, en pratique, la source micro-onde extérieure 41 prend la forme d’un four à micro-ondes conventionnel comprenant une cavité à l’intérieur de laquelle la capsule 1 ainsi que le support de lyse 3 – la capsule 1 étant reçue dans le logement 35 – sont positionnés. Une telle source micro-onde extérieure 41 émet des micro-ondes à une fréquence comprise entre 0,3 et 30 gigahertz (GHz), et de préférence égale à 2,45 gigahertz (GHz). Dans l’exemple de la FIG. 6 , le support de lyse 3 comprend une première paire d’entretoises 43 et 45 et une deuxième paire d’entretoises 47 et 49. La première paire d’entretoises 43 et 45 est agencée pour solidariser la première électrode 31 et le socle 29 tandis que la deuxième paire d’entretoises 47 et 49 est agencée pour solidariser la deuxième électrode 33 et le socle 29. Pour ce faire, le socle 29 présente deux paires de trous borgnes sur sa face supérieure tandis que chacune des électrodes 31 et 33 présente une paire de trous borgnes sur sa face inférieure. La face inférieure de chacune des électrodes 31 et 33 est destinée à être vis-à-vis de la face supérieure du socle 29 lorsque les électrodes 31 et 33 sont maintenues par le socle 29. La paire de trous borgnes de la première électrode 31 est complémentaire de l’une des paires de trous borgnes du socle 29 tandis que la paire de trous borgnes de la deuxième électrode 33 est complémentaire de l’autre paire de trous borgnes du socle 29. Il est possible d’assembler le socle 29 et la première électrode 31 en insérant tout d'abord l'entretoise 43 et l’entretoise 45 dans une paire de trous borgnes du socle 29 puis en positionnant la première électrode 31 de telle sorte que l’entretoise 43 et l’entretoise 45 s’insèrent également dans les trous borgnes de la première électrode 31. De même il est possible d’assembler le socle 29 et la deuxième électrode 33 en insérant tout d'abord l'entretoise 47 et l’entretoise 49 dans l’autre paire de trous borgnes du socle 29 puis en positionnant la deuxième électrode 33 de telle sorte que l’entretoise 47 et l’entretoise 49 s’insèrent également dans les trous borgnes de la deuxième électrode 33. Lorsque les électrodes 31 et 33 sont maintenues par le socle 29, les entretoises 43, 45, 47 et 49 s’étendent le long de la direction Z. Par conséquent, les entretoises 43, 45, 47 et 49 empêchent toute translation des électrodes 31 et 33 le long d’une direction autre que la direction Z. En particulier, les électrodes 31 et 33 ne peuvent translater le long de la direction X et donc se rapprocher ou s’éloigner l’une de l’autre. Outre le maintien des électrodes 31 et 33, les entretoises 43, 45, 47 et 49 ont également pour fonction de séparer les électrodes 31 et 33 du socle 29. Typiquement, les entretoises 43, 45, 47 et 49 permettent de séparer les électrodes 31 et 33 du socle 29 d’une distance comprise entre 0,1 et 80 millimètres (mm), et de préférence comprise entre 0,1 et 20 millimètres (mm). Les entretoises 43, 45, 47 et 49 doivent aussi peu que possible dissiper l’énergie absorbée par les électrodes 31 et 33 lorsque ces dernières sont exposées aux micro-ondes émises par la source micro-onde extérieure 41. De telles entretoises 43, 45, 47 et 49 doivent dégager peu de chaleur et favoriser l’établissement du champ électrique au sein de la capsule 1, et plus précisément de la portion de la capsule 1 reçue dans le logement 35. Pour ce faire, les entretoises 43, 45, 47 et 49 doivent être fabriquées à partir d’un matériau adéquat. Un tel matériau est par exemple la céramique, le polytétrafluoroéthylène (PTFE), le polyéthylène, le polypropylène, le polyimide, un polyépoxyde ou du silicone. Il est par ailleurs possible d’utiliser un polymère chargé en céramique. Il doit être noté qu’il est possible d’utiliser une seule entretoise pour maintenir la première électrode 31 et une seule entretoise pour maintenir la deuxième électrode 33. À l’inverse, il est possible d’utiliser plusieurs entretoises pour maintenir la première électrode 31 et la deuxième électrode 33, et en particulier d’utiliser trois entretoises ou plus pour chacune. Toutefois, il est également possible, dans d’autres mode de réalisation, de ne pas avoir d’entretoises. Par exemple, les électrodes 31 et 33 peuvent reposer directement sur le socle 29 et l’arrêt en translation peut alors être assuré par des butées présentes sur la face supérieure du socle 29. Toujours à titre d’exemple, la face supérieure du socle 29 peut prendre la forme d’une cuve dont le rebord permet de limiter la translation des électrodes 31 et 33 le long de toute direction autre que la direction Z. Comme mentionné précédemment le support de lyse 3 comprend une ou plusieurs paires d’électrodes. Dans les exemples décrits précédemment, le support de lyse 3 ne comprend qu’une unique paire d’électrodes, à savoir la paire d’électrodes formée par la première électrode 31 et la deuxième électrode 33. La FIG. 7 montre en vue de haut deux configurations possibles (a) et (b) du support de lyse 3. La configuration (a) correspond au cas décrit jusqu’à présent dans lequel le support de lyse 3 comprend une seule paire d’électrodes formée par la première électrode 31 et la deuxième électrode 33. La configuration (b) correspond à un cas dans lequel le support de lyse 3 comprend plusieurs paires d’électrodes, et plus exactement une première paire d’électrodes 51 et 53, une deuxième paire d’électrodes 55 et 57 et une troisième paire d’électrodes 59 et 61. Pour chacune des configurations (a) et (b), des lignes courbes reliant les deux électrodes de chaque paire d’électrodes correspondent au champ électrique induit par ces deux électrodes. Comme expliqué plus haut, lorsque les électrodes d’une paire d’électrodes présentent une forme allongée, ces électrodes s’étendent selon des directions longitudinales respectives qui forment un angle compris entre 5° et 180°. Dans la configuration (a), les directions longitudinales respectives de la première électrode 31 et de la deuxième électrode 33 forment un angle de 180°. Dans la configuration (b), les directions longitudinales respectives des deux électrodes de chaque paire d’électrodes forment un angle de 45°. Un procédé de lyse d’éléments organiques d’un échantillon biologique par micro-ondes mis en œuvre avec la capsule 1 et le support de lyse 3 de la FIG. 1 est décrit ci-après en référence à la FIG. 8 . La capsule 1, le support de lyse 3 et la ou les paire(s) d’électrodes, ici une seule paire d’électrodes formée par la première électrode 31 et la deuxième électrode 33, se présentent sous la forme d’un kit, c’est-à-dire des pièces détachées destinées à être assemblées. Lors d’une opération 800, le bouchon de la capsule 1 est ouvert et un instrument de distribution 63 est utilisé pour déposer un échantillon biologique liquide dans la capsule 1. À cette occasion, un électrolyte peut également être déposé dans la capsule 1. Alternativement, l’électrolyte est déjà présent dans la capsule 1. Lors d’une opération 810, le bouchon de la capsule 1 est fermé. Lors d’une opération 820, le socle 29 et la paire d’électrodes 31 et 33 sont assemblés pour former le support de lyse 3. Le socle 29 maintient la première électrode 31 et la deuxième électrode 33 dans des positions relatives respectives dans lesquelles elles définissent un logement 35. La capsule 1 est ensuite reçue dans le logement 35. Plus précisément, une portion de la capsule 1 est reçue de manière détachable dans le logement 35. Lors d’une opération 830, l’ensemble formé par la capsule 1 et le support de lyse 3 est exposé à une source micro-onde extérieure émettant des micro-ondes à une fréquence comprise entre 0,3 et 30 gigahertz (GHz), et de préférence égale à 2,45 gigahertz (GHz). Pour ce faire, un tel ensemble est par exemple placé dans la cavité d’un four à micro-ondes conventionnel, lequel joue alors le rôle de source micro-onde extérieure. Le support de lyse 3 permet d’établir un champ électrique présentant une force électrique comprise entre 2 et 100 kV.m -1 , et de préférence comprise entre 5 et 50 kV.m - 1 , au sein de la portion de la capsule 1 reçue dans le logement 35. Un tel champ électrique permet de réaliser une lyse des éléments organiques de l’échantillon biologique liquide contenu dans la capsule 1. L’exposition aux micro-ondes permet ainsi d’obtenir un lysat, lequel contient le matériel génétique, notamment l’ADN et l’ARN, extrait des éléments organiques de l’échantillon biologique liquide. Lors d’une opération 840, le bouchon de la capsule 1 est ouvert et un instrument de prélèvement est utilisé pour prélever le lysat dans la capsule 1. Enfin, lors d’une opération 850, une ou plusieurs analyses du lysat prélevé sont réalisées. Un test par amplification des acides nucléiques tel qu’un test PCR est par exemple réalisé. La PCR permet de produire, in vitro , un grand nombre de copies d’un fragment d’ADN, ce qui facilite la détection de matériel génétique. Un procédé de lyse d’éléments organiques d’un échantillon biologique par micro-ondes mis en œuvre avec la capsule 1 et le support de lyse 3 de la FIG. 6 est décrit ci-après en référence à la FIG. 9 . On comprend ici que la capsule 1 utilisée est celle de la FIG. 2 . Là encore, la capsule 1, le support de lyse 3 et la ou les paire(s) d’électrodes, ici une seule paire d’électrodes formée par la première électrode 31 et la deuxième électrode 33, se présentent sous la forme d’un kit. Il est à noter que, dans cet exemple, la capsule 1, le bouchon 5 et le réservoir 7 sont des pièces détachées qui sont destinées à être assemblées pour placer l’ensemble ainsi formé dans le support de lyse 3. Un tel ensemble peut être vu comme une capsule 1 à part entière. Lors d’une opération 900, un instrument de distribution 63 est utilisé pour déposer un échantillon biologique liquide dans le réservoir 7. À cette occasion, un électrolyte peut également être déposé dans le réservoir 7. Alternativement, l’électrolyte est déjà présent dans le réservoir 7. Lors d’une opération 910, la capsule 1 est montée sur le réservoir 7. Par exemple, la paroi interne du corps de la capsule 1 est taraudée et le réservoir 7 présente un filet externe complémentaire de telle sorte que la capsule 1 puisse être vissée sur le réservoir 7. Lors d’une opération 920, une filtration de l’échantillon biologique liquide est réalisée. Pour ce faire, l’ensemble formé par la capsule 1 et le réservoir 7 est tout d’abord retourné pour faire circuler l’échantillon biologique liquide, et éventuellement l’électrolyte, du réservoir 7 à la chambre de collecte 11 de la capsule 1. L’utilisateur peut ensuite comprimer la capsule 1, qui a typiquement un corps flexible, pour presser la capsule 1 et ainsi faire passer l’échantillon biologique liquide à travers la couche absorbante 13 et le filtre 15. Comme illustré sur la FIG. 9 , le filtrat de l’échantillon biologique liquide peut s’écouler de la capsule 1 par le canal d’évacuation 21. Lors d’une opération 930, le bouchon 5 est monté sur la capsule 1. Par exemple, la paroi interne du corps 23 du bouchon 5 est taraudée et le corps de la capsule 1 présente un filet externe complémentaire de telle sorte que le bouchon 5 puisse être vissé sur la capsule 1. Lors d’une opération 940, le socle 29 et la paire d’électrodes 31 et 33 sont assemblés pour former le support de lyse 3. Le socle 29 maintient la première électrode 31 et la deuxième électrode 33 dans des positions relatives respectives dans lesquelles elles définissent un logement 35. La capsule 1 est ensuite reçue dans le logement 35. Plus précisément, une portion de la capsule 1 est reçue de manière détachable dans le logement 35. Pour ce faire, l’ensemble formé par la capsule 1, le bouchon 5 et le réservoir 7 est retourné puis placé dans le logement 35. Le maintien en position de cet ensemble est rendu possible par les passages 27 du corps 23 du bouchon 25 au sein desquels sont reçues les électrodes 31 et 33. Lors d’une opération 950, l’ensemble formé par la capsule 1, le bouchon 5, le réservoir 7 et le support de lyse 3 est exposé à une source micro-onde extérieure émettant des micro-ondes à une fréquence comprise entre 0,3 et 30 gigahertz (GHz), et de préférence égale à 2,45 gigahertz (GHz). Dans l’exemple de la FIG. 9 , cet ensemble est placé dans la cavité d’un four à micro-ondes conventionnel 67, lequel joue alors le rôle de source micro-onde extérieure. Comme mentionné plus haut, le support de lyse 3 permet d’établir un champ électrique présentant une force électrique comprise entre 2 et 100 kV.m -1 , et de préférence comprise entre 5 et 50 kV.m - 1 , au sein de la portion de la capsule 1 reçue dans le logement 35. Un tel champ électrique permet de réaliser une lyse des éléments organiques de l’échantillon biologique liquide contenu dans la capsule 1 et ainsi d’obtenir un lysat, lequel contient le matériel génétique, notamment l’ADN et l’ARN, extrait des éléments organiques de l’échantillon biologique liquide. Lors d’une opération 960, la capsule 1, le bouchon 5 et le réservoir 7 sont retirés du logement 35. La capsule 1, le bouchon 5 et le réservoir 7 sont ensuite désassemblés pour récupérer la capsule 1 seule. La capsule 1 contient le lysat à analyser. Lors d’une opération 970, la capsule 1 est montée sur un réservoir 69 contenant un liquide d’élution. De même que le réservoir 7, le réservoir 69 peut présenter un filet externe complémentaire de la paroi interne du corps de la capsule 1 de telle sorte que la capsule 1 puisse être vissée sur le réservoir 69. Enfin, lors d’une opération 980, l’ensemble formé par la capsule 1 et le réservoir 69 est retourné pour faire circuler le liquide d’élution du réservoir 69 à la chambre de collecte 11. Le liquide d’élution permet d’évacuer le lysat, lequel s’écoule alors le long du canal d’évacuation 21 et peut être déposé, par exemple gouttelette par gouttelette, sur un support à échantillon 71 pour réaliser une PCR. Un tel support à échantillon 71 est par exemple une plaque de culture cellulaire, une cartouche microfluidique ou encore un tube. La FIG. 10 montre les performances de trois tests PCR différents réalisés chacun sur un échantillon biologique contenant de l’ARN ribosomique 26S. L’ARN ribosomique 26S est une composante des ribosomes, qui sont les complexes cellulaires responsables de la traduction de l’ARN messager (ARNm) en protéines. En particulier, l’ARN ribosomique 26S contribue à la formation du site de catalyse où se déroule la liaison peptidique entre les acides aminés successifs lors de la synthèse de protéines. Le graphique de la FIG. 10 montre l’évolution de l’unité de fluorescence relative (plus connue sous le sigle anglophone RFU pour « relative fluorescence unit ») en fonction du nombre de cycles de la PCR. La RFU permet de quantifier la fluorescence émise par un marqueur fluorescent pendant la PCR et d’évaluer la quantité d’ADN amplifié à chaque cycle de la PCR. La RFU est une mesure relative de la fluorescence par rapport à une valeur de référence, laquelle est souvent définie comme la fluorescence émise par une certaine quantité d’ADN ou par un agent fluorescent standard. Comme détaillé plus haut, un cycle de PCR comprend trois étapes : la dénaturation (environ 94-95°C) pour séparer les brins d’ADN, l’hybridation (à une température variable, typiquement comprise entre 40 et 65°C) pour fixer des amorces aux fragments d’ADN et, enfin, l’élongation (environ 72°C) pour fixer l’ADN polymérase aux amorces d’ADN et assembler les nucléotides. Le premier test PCR est un test PCR direct, c’est-à-dire un test basé sur une PCR réalisée directement sur l’échantillon biologique, et donc sans lyse. La courbe correspondant à ce premier test PCR est celle marquée par des ronds. Le deuxième test PCR est un test basé sur une PCR réalisée sur l’échantillon biologique après que celui-ci a été traité selon le procédé appelé « beat beating » en utilisant un broyeur-homogénéisateur à billes de la gamme Precellys commercialisée par la société Bertin Technologies (marque enregistrée). La courbe correspondant à ce deuxième test PCR est celle marquée par des losanges. Enfin, le troisième test PCR est un test basé sur une PCR réalisée sur l’échantillon biologique après que celui-ci a été traité selon le procédé de lyse représenté sur la FIG. 8 ou sur la FIG. 9 , c’est à dire une lyse par micro-ondes mise en œuvre en utilisant le support de lyse 3. La courbe correspondant à ce troisième test PCR est celle marquée par des triangles. On constate que le troisième test PCR donne de meilleurs résultats que le premier test PCR à partir de 15 cycles. Par ailleurs, il apparaît que le troisième test PCR donne de meilleurs résultats que le deuxième test PCR à partir de 24 cycles. La FIG. 11 est un schéma pseudo-électrique qui illustre les impédances induites, d’une part, par la portion de la capsule 1 reçue dans le logement 35 et, d’autre part, par le socle 29. L’impédance Z 1 induite par la portion de la capsule 1 reçue dans le logement 35 dépend de plusieurs facteurs tels que l’épaisseur de la paroi de la capsule 1, et plus exactement de l’épaisseur de la capsule 1 au niveau du logement 35, la présence éventuelle d’un électrolyte ou encore la distance séparant les électrodes de chaque paire d’électrodes. L’impédance Z 29 induite par le socle 29 dépend également de plusieurs facteurs tels que la forme, les dimensions et le matériau du socle 29, la présence éventuelle d’une ou plusieurs entretoises et, le cas échéant, la longueur et le matériau des entretoises. La confinement au sein de la portion de la capsule 1 reçue dans le logement 35 d’un champ électrique présentant une force électrique suffisante pour réaliser une lyse des éléments organiques de l’échantillon biologique contenu dans la capsule 1 est facilité par un choix de facteurs permettant à l’impédance Z 1 d’être strictement supérieure à l’impédance Z 29 à la fréquence des micro-ondes utilisée. En effet, l’énergie absorbée par les électrodes lorsqu’elles sont exposées à des micro-ondes doit se dissiper de préférence au niveau de la portion de la capsule 1 reçue dans le logement 35, et non dans le socle 29 ou dans les entretoises reliant mécaniquement le socle 29 et les électrodes. Pour ce faire, la Demanderesse a réalisé des expérimentations qui ont indiqué que, en présence d’une source micro-onde extérieure émettant des micro-ondes à une fréquence comprise entre 0,3 et 30 gigahertz (GHz), et de préférence égale à 2,45 gigahertz (GHz), une telle condition nécessite au moins que l’épaisseur de la capsule 1 soit comprise entre 0,1 et 5 millimètres (mm), et de préférence comprise entre 0,5 et 1,5 millimètres (mm), et que les électrodes de chaque paire d’électrodes soient séparées d’une distance comprise entre 0,3 et 20 millimètres (mm), et de préférence comprise entre 0,5 et 10 millimètres (mm). La force électrique du champ électrique établi par le support de lyse 3 au sein de la portion de la capsule 1 reçue dans le logement 35 est alors comprise entre 2 et 100 kV.m -1 , et avantageusement entre 5 et 50 kV.m - 1 . En tout état de cause, et parmi les facteurs listés précédemment, l’obtention d’une impédance Z 1 supérieure à l’impédance Z 29 est garantie par la présence dans la capsule 1 d’un électrolyte ayant une conductivité comprise entre 10 -19 S.m -1 et 10 3 S.m -1 , et de préférence comprise entre 1 S.m -1 et 10 3 S.m -1 . Un électrolyte présentant une telle conductivité a systématiquement permis à la Demanderesse d’obtenir un champ électrique présentant la force électrique requise pour réaliser une lyse des éléments organiques de l’échantillon biologique. Bien entendu, dans le périmètre délimité par les conditions nécessaires évoquées précédemment – à savoir les conditions relatives à l’épaisseur de la paroi de la capsule 1 et à la distance séparant les électrodes de chaque paire d’électrodes, la Demanderesse a constaté qu’il était possible de jouer sur plusieurs facteurs ou paramètres pour obtenir le champ électrique présentant la force électrique souhaitée. En particulier, en plus des facteurs ayant une influence sur les impédances Z 1 et Z 29 , il est possible de jouer sur le nombre de paires d’électrodes, l’angle formé par les directions longitudinales respectives des électrodes de chaque paire d’électrodes, la forme, les dimensions et le matériau des électrodes. En particulier, pour une fréquence donnée de micro-ondes émises par la source micro-onde extérieure, il est particulièrement avantageux que les électrodes présentent une longueur de l’ordre de λ/2 ou λ/4, où λ est la longueur d’ondes des micro-ondes ; et/ou que le socle 29 présente une longueur de l’ordre de λ ou de λ/2. Par ailleurs, quel que soit le mode de réalisation envisagé, il doit être noté que l’établissement d’un champ électrique présentant une force électrique comprise entre 2 et 100 kV.m -1 au sein de la portion de la capsule 1 reçue dans le logement 35 en présence d’une source micro-onde extérieure émettant des micro-ondes à une fréquence comprise entre 0,3 et 30 gigahertz (GHz) peut être vérifié directement. En effet, pour évaluer les performances d’un mode de réalisation, la Demanderesse a procédé au test thermique détaillé ci-après. Une solution d’électrolyte est versée dans un tube à capuchon standard d’une capacité de 2,0 millilitres (mL). Cette solution d’électrolyte contient un tampon Tris HCl. Le tampon Tris HCl a une concentration dans la solution d’électrolyte de 250 millimoles par litres (mM). Le tube à capuchon standard est positionné dans un support en mousse, lequel est placé dans un four à micro-ondes conventionnel émettant des micro-ondes ayant une fréquence de l’ordre de 2,45 gigahertz (GHz). Un chronomètre démarre en même temps que le four à micro-ondes conventionnel. La pression induite par la solution d’électrolyte chauffée finit par faire sauter le capuchon du tube et le chronomètre est alors arrêté. Le temps obtenu – ici 120 secondes (s) constitue un temps de référence. Pour chaque support de lyse 3 à tester, la même expérience est reproduite mais en remplaçant le support en mousse par le support de lyse 3. À titre d’exemple, la FIG. 12 est une photographie d’un support de lyse 3 testé avec succès par la Demanderesse. La comparaison entre le temps mesuré pour le support de lyse 3 et le temps de référence permet d’évaluer la performance du support de lyse 3. Un temps mesuré cinq fois plus faible que le temps de référence, donc 24 secondes (s), met en évidence l’établissement d’un champ électrique présentant une force électrique adéquate. Kit pour lyse d’éléments organiques d’un échantillon biologique par micro-ondes comprenant : - une capsule (1) agencée pour recevoir un échantillon biologique et présentant une paroi dont l’épaisseur est comprise entre 0,1 et 5 mm, - au moins une paire d’électrodes (31, 33, 51, 53, 55, 57, 59, 61), et - un socle (29) agencé pour maintenir les électrodes (31, 33, 51, 53, 55, 57, 59, 61) de chaque paire d’électrodes (31, 33, 51, 53, 55, 57, 59, 61) dans des positions relatives respectives dans lesquelles lesdites électrodes (31, 33, 51, 53, 55, 57, 59, 61) sont séparées d’une distance comprise entre 0,3 et 20 mm de manière à définir un logement (35) propre à recevoir de manière détachable une portion de ladite capsule (1), ledit socle (29) et l’au moins une paire d’électrodes (31, 33, 51, 53, 55, 57, 59, 61) formant alors ensemble un support de lyse (3), ledit support de lyse (3) permettant d’établir, en présence d’une source micro-onde extérieure (41, 67) émettant des micro-ondes à une fréquence comprise entre 0,3 et 30 GHz, un champ électrique présentant une force électrique comprise entre 2 et 100 kV.m -1 au sein de la portion de la capsule (1) lorsque celle-ci est reçue dans ledit logement (35). Kit selon la revendication 1, dans lequel la capsule (1) contient un électrolyte ayant une conductivité comprise entre 10 -19 S.m -1 et 10 3 S.m -1 . Kit selon la revendication 2, dans lequel l’électrolyte a une conductivité comprise entre 1 S.m -1 et 10 3 S.m -1 . Kit selon l’une des revendications précédentes, dans lequel la capsule (1) présente une paroi dont l’épaisseur est comprise entre 0,5 et 1,5 mm. Kit selon l’une des revendications précédentes, dans lequel le socle (29) est agencé pour maintenir les électrodes (31, 33, 51, 53, 55, 57, 59, 61) de chaque paire d’électrodes (31, 33, 51, 53, 55, 57, 59, 61) dans des positions relatives respectives dans lesquelles lesdites électrodes (31, 33, 51, 53, 55, 57, 59, 61) sont séparées d’une distance comprise entre 0,5 et 10 mm. Kit selon l’une des revendications précédentes, dans lequel les électrodes (31, 33, 51, 53, 55, 57, 59, 61) de chaque paire d’électrodes (31, 33, 51, 53, 55, 57, 59, 61) présentent une forme allongée s’étendant selon une direction longitudinale respective, et dans lequel le socle (29) est agencé pour maintenir les électrodes (31, 33, 51, 53, 55, 57, 59, 61) de chaque paire d’électrodes (31, 33, 51, 53, 55, 57, 59, 61) dans des positions relatives respectives dans lesquelles les directions longitudinales respectives desdites électrodes (31, 33, 51, 53, 55, 57, 59, 61) forment un angle compris entre 5° et 180°. Kit selon la revendication 6, dans lequel le socle (29) est agencé pour maintenir les électrodes (31, 33, 51, 53, 55, 57, 59, 61) de chaque paire d’électrodes (31, 33, 51, 53, 55, 57, 59, 61) dans des positions relatives respectives dans lesquelles les directions longitudinales respectives desdites électrodes (31, 33, 51, 53, 55, 57, 59, 61) forment un angle sensiblement égal à 180°. Kit selon l’une des revendications précédentes, comprenant en outre une pluralité d’entretoises (43, 45, 47, 49), chaque entretoise (43, 45, 47, 49) étant agencée pour solidariser une électrode (31, 33, 51, 53, 55, 57, 59, 61) de l’au moins une paire d’électrodes (31, 33, 51, 53, 55, 57, 59, 61) et le socle (29), ladite électrode (31, 33, 51, 53, 55, 57, 59, 61) et ledit socle (29) solidarisés étant séparés par une distance comprise entre 0,1 et 80 mm, et de préférence comprise entre 0,1 et 20 mm. Kit selon l’une des revendications précédentes, dans lequel le support de lyse (3) permet d’établir, en présence d’une source micro-onde extérieure (41, 67) émettant des micro-ondes à une fréquence comprise entre 0,3 et 30 GHz, un champ électrique présentant une force électrique comprise entre 5 et 50 kV.m -1 au sein de la portion de la capsule (1) lorsque celle-ci est reçue dans ledit logement (35). Procédé de lyse d’éléments organiques d’un échantillon biologique par micro-ondes mis en œuvre au moyen du kit selon l’une des revendications précédentes, ledit procédé comprenant les opérations suivantes : - déposer (800, 900) un échantillon biologique dans la capsule (1), - assembler (820, 940) le socle (29) et l’au moins une paire d’électrodes (31, 33, 51, 53, 55, 57, 59, 61) pour former le support de lyse (3), - placer (820, 940) la portion de capsule (1) dans le logement (35), et - exposer (830, 950) le support de lyse (3) à une source micro-onde extérieure (41, 67) émettant des micro-ondes à une fréquence comprise entre 0,3 et 30 GHz.