Brevet FR3162757A1 — publié le 20251205

TITRE : UTILISATION D’UNE SOUCHE DE L’ESPÈCE BACILLUS SIAMENSIS À TITRE DE BIOSOLUTION EN CULTURE DE CHAMPIGNONS La présente invention concerne l’utilisation d’une espèce bactérienne particulière à titre de biosolution dans la production et la culture de champignons. Plus particulièrement, l’invention concerne l’utilisation d’une souche de Bacillus siamensis , déposée auprès de la CNCM sous le numéro d’ordre CNCM I-5921, dans la stimulation du développement et de la croissance d’un mycélium ou d’un champignon ou l’amélioration des rendements des cultures d’un champignon comestible, et dans la lutte contre les principaux pathogènes fongiques des cultures de champignons comestibles. [Fig. 1] UTILISATION D’UNE SOUCHE DE L’ESPÈCE BACILLUS SIAMENSIS À TITRE DE BIOSOLUTION EN CULTURE DE CHAMPIGNONS La présente invention concerne l’utilisation d’une espèce bactérienne particulière à titre de biosolution dans la production et la culture de champignons. Plus particulièrement, l’invention concerne l’utilisation d’une souche de Bacillus siamensis , déposée auprès de la Collection Nationale de Culture des Microorganismes (CNCM) sous le numéro d’ordre CNCM I-5921, dans la stimulation du développement et de la croissance d’un mycélium ou d’un champignon ou l’amélioration des rendements des cultures de champignons comestibles, et dans la lutte contre les principaux pathogènes fongiques des cultures de champignons comestibles. Les champignons comestibles sont utilisés depuis toujours par l’Homme notamment pour leurs qualités alimentaires ou leurs vertus médicinales. Il existe de nombreuses variétés de champignons mais les plus cultivés dans le monde sont le champignon de Paris ( Agaricus bisporus ), les pleurotes ( Pleurotus ostreatus, Pleurotus eryngii , etc.) et le shiitake ( Lentinula edodes). Le champignon de Paris représente à lui seul plus de 40 % du marché mondial, les pleurotes 25 % et le shiitake 15 %. Les principaux acteurs du marché à l’échelle mondiale sont la Chine, qui produit de loin la majeure partie des champignons comestibles dans le monde, les États-Unis et l’Europe. À l’échelle industrielle, la méthode de production de champignons peut se décomposer en trois étapes : la première concerne l’obtention d’inoculum de mycélium, la seconde concerne la production de substrats de fructification et la troisième concerne la culture à proprement parler des champignons, à partir des mycéliums et des substrats obtenus lors des deux premières étapes. Ces trois étapes peuvent être réalisées indépendamment par des acteurs différents, la première par un producteur de mycéliums, la seconde par un producteur de substrats et la troisième par un champignonniste, ou par un seul et même acteur, le champignonniste. L’obtention d’inoculum de mycéliums débute par l’inoculation d’un milieu de culture stérilisé à partir de spores ou d’un morceau d’inoculum. Le milieu de culture peut être de la gélose, telle que de la gélose dextrosée à la pomme de terre (PDA, Potato Dextrose Agar), un milieu liquide tel que du bouillon dextrosé à la pomme de terre (PDB, Potato Dextrose Broth), ou toute autre solution nutritive contenant un gélifiant ou non. Le développement et la croissance du mycélium sur son milieu de culture sont variables mais s’étendent généralement de 7 à 28 jours, en fonction de la souche de champignon. Une fois que le mycélium a totalement colonisé le milieu de culture, un morceau du milieu de culture est alors prélevé pour l’inoculation d’un substrat de colonisation. Un substrat de colonisation adapté peut être synthétique, ou le plus souvent composé de céréales, généralement de seigle, de millet, de sorgho, de blé, d’orge, de riz ou d’avoine, préalablement stérilisées et conditionnées dans des bocaux ou des sacs de culture micro-perforés. L’inoculum de mycélium ainsi obtenu est ensuite utilisé dans la culture et la production des champignons. L’inoculum est donc utilisé pour ensemencer un substrat de fructification. Dans le cas du champignon de Paris, le substrat de fructification est un compost généralement composé de pailles et de déjections animales, arrosé abondamment pour garantir sa maturation durant deux à trois semaines. Le substrat de fructification est ensuite pasteurisé durant quelques jours avec des températures décroissantes de 60 à 40°C. L’ensemencement du substrat de fructification se fait après pasteurisation, par exemple à l’aide d’une lardeuse, par mélange de l’inoculum contenu dans son substrat de colonisation et du substrat de fructification. Il s’en suit une période d’incubation durant laquelle les substrats de fructification inoculés sont placés dans un local clos dont la température, l'humidité et l'oxygène sont contrôlés pendant deux semaines. La température est maintenue de 22 à 25°C. L’étape ultérieure est le gobetage, qui consiste à recouvrir le substrat de fructification d’une couche de terre adaptée. La terre de gobetage est, par exemple, un mélange de tuffeau, broyé et désinfecté et de tourbe horticole. Après une baisse de température contrôlée, les premières têtes de champignons sortent du substrat de fructification, et la récolte peut alors commencer. La cueillette de champignons de Paris suit plusieurs cycles de fructification appelés volées, ou alternance de périodes de récoltes et de repos végétatif. Les deux premières volées sont de loin les plus productives avec 50 % de la récolte totale attribuée à la 1ère volée et 35 % à la 2ème. Le cycle de récolte se renouvelle environ chaque semaine. La récolte peut être conduite jusqu’en 3ème volée, mais les rendements déclinent rapidement. Dans la tendance actuelle, les champignonnistes cherchent à maximiser leurs rendements de façon à ne produire que sur deux volées pour des raisons de productivité mais également d'hygiène, car la 3 ème volée est souvent une porte d’entrée au développement de maladies et à leur installation à plus long terme. Ce dernier aspect est particulièrement important puisque la filière champignon, aujourd’hui en pleine mutation, est en demande de bio-solutions efficaces et respectueuses de l’environnement, qui puissent l’aider à traverser plus sereinement la transition agroécologique en cours. Tout produit augmentant les rendements des premières récoltes tout en préservant la qualité de la production, permet à la fois de raccourcir les cycles de production tout en générant des économies d’énergie, et d’éviter la prolifération de maladies qui représentent une menace grandissante. La culture de champignons est connue pour être l’une des plus vertueuses au monde. Son mode de production utilise les capacités de biodégradation sans égal du règne Fungi , pour produire de la nourriture saine à partir de déchets agricoles, mélanges de matières végétales et animales compostées. Rapportée à une même unité de surface, la myciculture reste l’une des plus saines et nourricières, et économes en énergie et en eau, tout en dégradant ou agradant une grande variété de matières organiques. Le cas des champignonnières urbaines est d’autant plus parlant puisqu’elles consomment exclusivement des déchets alimentaires ou des invendus, produits dans leur environnement proche. Le nombre de ces fermes urbaines augmente rapidement car elles se focalisent sur la production des espèces exotiques comme les pleurotes ( Pleurotus ostreatus , Pleurotus eryngii , etc.) et le shiitake ( Lentinula edodes ), connues pour être plus faciles à faire fructifier. Une autre des grandes vertus de la myciculture est la valorisation du compost en fin de récolte, toutes espèces de champignons confondues. Appelé champost ou SMS (Spent Mushroom Substrate), il est très recherché comme amendement pour les cultures de plein champ par les agriculteurs, car très équilibré et riche en éléments nutritifs et en biodiversité. Les principaux pathogènes fongiques de la culture de champignons dans le monde sont Dactylium dendroides , ou encore nommé Cladobotryum spp., Verticillium fungicola, ou encore nommé Lecanicillium fungicola , et Mycogone perniciosa , ou encore nommé Hypomyces perniciosus , qui peuvent apparaître dès les premiers jours de récoltes en s’attaquant aux primordia et aux carpophores, rendus impropres à la consommation. Les champignons dits compétiteurs, comme Trichoderma aggressivum , ou encore nommé Trichoderma spp., colonisent le substrat de fructification et entre en compétition directe avec le champignon cultivé, réduisant drastiquement la quantité d’éléments nutritifs disponibles. Ces pathogènes spécialisés et extrêmement virulents se répandent d’autant plus rapidement que la culture de champignons se fait en milieux clos, sous-abris et en conditions de températures et d’humidité particulièrement propices à leur développement. Les pertes de rendements peuvent ainsi varier de 20 % à 100 % dans le pire des cas, et l’impact économique pour les champignonnistes est d’autant plus important si la maladie se déclare tôt, car il n’existe aucun moyen de lutte curatif. Seule la prophylaxie permet de limiter l’apparition de ces pathogènes, telle que l’application de produits phytosanitaires dès la mise en culture, ou la désinfection du matériel et des salles de fructification à l’aide de désinfectants chimiques ou par traitements thermiques, particulièrement énergivores. Plusieurs produits phytosanitaires efficaces étaient encore à disposition des champignonnistes il y a peu, comme le Sporgon® (prochloraz-Mn) et le Banko® (chlorothalonil) qui sont aujourd’hui interdits en Europe. Le Vivando® (métrafénone) seul encore autorisé, ne montre plus qu’une efficacité réduite. Depuis plusieurs années, tous les pathogènes ont progressivement développé des résistances aux molécules de synthèse qui, interdites les unes après les autres, leur laissent aujourd’hui le champ entièrement libre. Le résultat en Europe est alarmant, avec un nombre croissant de champignonnistes totalement démunis qui voient des maladies disparues, réapparaitre et s’installer durablement. Afin de trouver des moyens de lutte contre les maladies du carpophore des champignons, plusieurs essais ont déjà été réalisés par le passé pour tester des produits de biocontrôle disponibles sur le marché, comme le Serenade® ( Bacillus velezensis QST 713), l’Amylo-X® ( Bacillus amyloliquefaciens D747), le Serifel® ( Bacillus amyloliquefaciens MBI 600), ou le Sonata® ( Bacillus pumilus QST 2808). Aucun n’a pu montrer d’efficacité sur les principaux pathogènes de la culture de champignons que sont Dactylium dendroides , Verticillium fungicola et Mycogone perniciosa . Le Serenade® et l’Amylo-X® se sont montrés uniquement efficaces contre le champignon dit compétiteur, Trichoderma aggressivum . La filière champignons a donc cruellement besoin de bio-solutions efficaces et respectueuses de l’environnement, qui augmentent les rendements des cultures dès les premières récoltes, pour raccourcir les cycles de production et empêcher les maladies de se développer et de s’installer plus durablement. Pour être pérennes, les solutions développées doivent être sûres pour la santé humaine et rester simples d’utilisation, en s’insérant naturellement dans les itinéraires techniques propres à la culture de champignons. L’utilisation de biostimulants dans les méthodes de productions agricoles est en plein développement. Les biostimulants sont des substances capables de stimuler le métabolisme d’une plante, ou d’un champignon, et ses processus naturels d’absorption des nutriments. Plus précisément, le Règlement (UE) 2019/1009 du parlement européen et du conseil du 5 juin 2019 entrant en vigueur le 22 juillet 2022 définit un biostimulant comme « un produit qui stimule les processus de nutrition des végétaux indépendamment des éléments nutritifs qu’il contient, dans le but d’améliorer une ou plusieurs des caractéristiques suivantes des végétaux ou de leur rhizosphère : a) l’efficacité d’utilisation des éléments nutritifs, b) la tolérance au stress abiotique, c) les caractéristiques qualitatives, d) la disponibilité des éléments nutritifs confinés dans le sol ou la rhizosphère ». Le but de la présente invention est ainsi d’identifier et de proposer un biostimulant et agent de biocontrôle efficace et adapté aux méthodes de production et à la culture de champignons. En particulier, le biostimulant et agent de biocontrôle selon l’invention devra permettre de stimuler le développement du mycélium et du champignon et améliorer les rendements des cultures de champignons comestibles, tout au moins, éviter d’inhiber le développement et la perte de ces rendements, et de lutter contre les principaux pathogènes fongiques des cultures de champignons comestibles. Enfin, le biostimulant et agent de biocontrôle selon l’invention devra être utilisable dans les méthodes classiques de production de substrats et de production des champignons. C’est dans ce but que la société déposante a mené ses recherches et a découvert qu’une espèce de Bacillus , présentait des capacités de biostimulation surprenantes sur le développement et les rendements des cultures de champignons comestibles, et dans la lutte contre les principaux pathogènes fongiques des cultures de champignons comestibles, en particulier lorsqu’elle est ajoutée dans leurs milieux de culture ou leurs substrats, et pouvait donc être utilisée dans les procédés et méthodes de culture de champignons. À cet effet, l’invention concerne une souche isolée de l’espèce Bacillus siamensis déposée auprès de la CNCM sous le numéro d’ordre CNCM I-5921. L’invention concerne encore l’utilisation d’une souche bactérienne de Bacillus siamensis , ou de la souche bactérienne isolée de Bacillus siamensis déposée auprès de la CNCM sous le numéro d’ordre CNCM I-5921, pour la stimulation du développement et de la croissance d’un mycélium ou d’un champignon, ou l’amélioration des rendements des cultures d’un champignon. L’invention concerne encore l’utilisation d’une souche bactérienne de Bacillus siamensis , ou de la souche bactérienne souche isolée de Bacillus siamensis déposée auprès de la CNCM sous le numéro d’ordre CNCM I-5921, pour lutter contre le développement des pathogènes des cultures d’un champignon tels que Dactylium dendroides , ou encore nommé Cladobotryum spp., Verticillium fungicola, ou encore nommé Lecanicillium fungicola , Mycogone perniciosa , ou encore nommé Hypomyces perniciosus , et Trichoderma aggressivum , ou encore nommé Trichoderma spp.. La souche bactérienne isolée en France par la société déposante, a été identifiée comme Bacillus siamensis selon la base de données NCBI (National Center for Biotechnology Information), après identification génotypique par séquençage de Sanger. Cette bactérie à Gram positif est aérobie et anaérobie-facultative, et capable de produire des endospores ellipsoïdales. Elle est fortement mobile avec des flagelles entourant la cellule, à ciliature péritriche. Cette espèce se distingue notamment par sa capacité à se diviser sur une large plage de températures variant de 4°C à 55°C, avec une température optimale de croissance de 37°C. Elle forme des colonies blanc-crème, muqueuses, semi-opaques, semi-bombées, et se développant de 3 à 4 mm autour du point d’inoculation après 2 à 3 jours en incubation à 25°C sur PDA. Le genre Bacillus est prisé en biotechnologie et très présent en fermentation microbienne à échelle industrielle car sa robustesse et sa rapidité de croissance en bioréacteur lui permettent de supporter des procédés agressifs comme le séchage par atomisation, bien moins coûteux que la lyophilisation pour obtenir une poudre de cellules déshydratées, particulièrement stable dans le temps. La société déposante a déposé la souche bactérienne à la CNCM (Collection Nationale de Cultures de Microorganismes) de l’Institut Pasteur, qui l’a validé et lui a attribué le numéro d’ordre CNCM I-5921. En culture de champignons de Paris, la souche CNCM I-5921 s’est montrée capable d’améliorer significativement les rendements pour atteindre + 21 % en fin de culture, comparativement au témoin non-traité, après une seule pulvérisation sur la terre de gobetage à une concentration de 1.10 10 cellules / m 2 , sans aucun effet délétère notable sur la qualité des récoltes. Parallèlement, la souche CNCM I-5921 s’est montrée capable de métaboliser l’octénol (CAS n°3391-86-4) en confrontation in vitro . Ce composé organique volatile (COV) aussi appelé alcool de champignon, est produit par le mycélium en cours de croissance, et tend à freiner voire bloquer l’initiation fructifère et la formation des primordia lorsqu’il est présent en trop grande quantité. L’octénol produit au contraire un effet biostimulant sur la croissance et le développement de la souche bactérienne CNCM I-5921. Cette découverte particulièrement importante et singulière, peut expliquer pourquoi la souche CNCM I-5921 permet d’augmenter significativement les rendements de champignons, après avoir été pulvérisée à la surface des cultures. En parallèle, l’éthylène (CAS n°74-85-1), une hormone végétale également produite par le mycélium en cours de croissance, peut inhiber son propre développement si la concentration de ce composé est trop importante. Certaines bactéries, comme la souche CNCM I-5921, peuvent produire de l’ACC-désaminase, une enzyme qui dégrade un précurseur dans la synthèse de l’éthylène et permet ainsi d’accélérer la croissance mycélienne. Il existe dans la nature, des bactéries dites PGPB (Plant-Growth-Promoting-Bacteria) ou FGPB (Fungal-GPB), voire exceptionnellement MGPB (Mycelium-GPB et/ou Mushroom-GPB). La souche bactérienne CNCM I-5921 de la société déposante s’avère être à la fois PGPB et MGPB, par le biais de mécanismes biologiques dont certains ont pu être mis en lumière par un travail conduit en interne. Cette double capacité est d’autant plus intéressante que la souche selon l’invention peut également améliorer les rendements d’une culture agricole amendée avec du compost de fin de culture de champignons sur lequel il aurait été précédemment appliqué. Après application du pathogène fongique Dactylium dendroides , particulièrement problématique du fait de sa virulence et de sa persistance dans les champignonnières (jusqu’à 40 % de pertes de rendements), la souche CNCM I-5921 permet de maintenir des rendements significativement supérieurs au témoin non-traité. Quoique moins efficace que le Sporgon®, produit phytosanitaire à base de prochloraz-Mn aujourd’hui interdit en Europe, la souche CNCM I-5921 permet, en une seule application à 2.10 9 cellules / m 2 , de maintenir des rendements statistiquement comparables jusqu’en fin de 2 ème volée, jusqu’à 76 % de l’efficacité atteinte par le Sporgon®. Une application plus concentrée à 5.10 9 cellules / m 2 , permet d’élever cette efficacité comparative à 81 % en fin de 2 ème volée, et à 65 % en fin de culture. Dans le même temps, cette unique application permet d’abaisser significativement la pression maladie de 90 %, comparativement au Sporgon® en fin de 2 ème volée, et de 64 % en fin de culture avec une 2 ème application. Cette découverte est particulièrement importante et singulière, car elle démontre que la souche CNCM I-5921 a également un potentiel curatif sur une culture de champignons déjà infectée, en application tardive. En effet, aucun agent de biocontrôle ni même de produit phytosanitaire, n’a pu contenir de pathogènes fongiques déjà présents au moment de son application en cultures de champignons. La réémergence de maladies est aujourd’hui un danger majeur pour les champignonnistes qui n’ont plus aucun moyen de lutte efficace à disposition, d’où la nécessité pour eux d’avoir rapidement accès à des solutions pérennes. Après application en culture de champignons du pathogène fongique Verticillium fungicola , qui cause 20 % de pertes de rendements à l’échelle mondiale, une seule pulvérisation de la souche CNCM I-5921 à une concentration comprise entre 2.10 5 et 2.10 9 cellules / m 2 , permet d’abaisser la pression maladie après la 2 ème volée (-32%), jusqu’en fin de culture (-32%). La souche CNCM I-5921 permet également de maintenir des rendements de champignons sains supérieurs tout en réduisant la masse de champignons malades, qui participent à propager les foyers infectieux au sein des cultures. En confrontation directe in vitro , la souche bactérienne CNCM I-5921 se montre particulièrement efficace contre les principaux pathogènes des cultures de champignons Dactylium dendroides , Verticillium fungicola , Mycogone perniciosa et Trichoderma aggressivum . L’invention apporte une solution pérenne et respectueuse de l’environnement aux champignonnistes, leur évitant d’avoir à utiliser des fongicides chimiques et d’avoir recours à la stérilisation des équipements, technique efficace à court terme et particulièrement énergivore. L’utilisation de biostimulants et d’agents de biocontrôle à large spectre, naturellement présents dans l’environnement, est une réelle innovation pour la production de champignons. L’utilisation de produits à effet biostimulant a un impact majeur sur la production de champignons. La principale limite des producteurs de champignons réside en effet dans leur capacité à produire rapidement, stocker et distribuer leurs champignons auprès de leurs clients. L’utilisation des biostimulants et d’agents de biocontrôle selon l’invention permet aux producteurs de raccourcir leurs cycles de production en augmentant les rendements dès les premières récoltes, et d’éviter l’apparition et l’installation de maladies. L’ajout des biostimulants et d’agents de biocontrôle peut ainsi être réalisé au cours des différentes phases de maturité du compost ou à la préparation de la terre de gobetage, plus particulièrement après le dépôt de la terre de gobetage sur le compost. Ainsi, lors d’essais réalisés sur la terre de gobetage, les cultures pulvérisées avec l’espèce de Bacillus siamensis sélectionnée selon l’invention, ont pu être observées et mesurées, une augmentation significative du rendement des cultures, une augmentation du nombre de champignons produits et, d’une manière générale, une amélioration de la qualité des champignons récoltés, y compris en présence de pathogènes fongiques. La souche de Bacillus sélectionnée selon l’invention s’est également montrée capable de retarder et de limiter le développement des pathogènes fongiques. L’espèce de Bacillus siamensis sélectionnée dans le cadre de l’invention a la particularité de présenter un effet fortement biostimulant, efficace sur une large plage de concentrations en application par arrosage ou par pulvérisation, adaptée aux itinéraires techniques des champignonnistes. Ainsi, la présente invention concerne l’utilisation d’une souche bactérienne de Bacillus siamensis , ou de la souche CNCM I-5921, pour l’amélioration des rendements de champignons en conditions de cultures saines, et une réduction du nombre de foyers infectieux et une augmentation des récoltes de champignons sains en présence de pathogènes fongiques des cultures. De plus, lors de la culture des champignons, l’apport de la souche CNCM I-5921 selon l’invention permet d’augmenter les rendements dès les premières volées et de maintenir les rendements en présence de pathogènes et de limiter leur propagation. Les effets sur la filière champignons s’accompagnent donc de bénéfices économiques et pratiques pour les producteurs, à chacune des étapes : Économies d’énergie liées à la possibilité de raccourcir les cycles de production en réduisant la durée des cultures de champignons tout en maintenant des rendements adaptables pour les champignonnistes, Économies de matières premières par la meilleure valorisation des substrats de fructification liée à l’augmentation des rendements de champignons et leurs qualités sanitaires, Économies de produits phytosanitaires de synthèse et réduction des résidus dans les denrées alimentaires pour les consommateurs et de la pollution des sols par l’ajout de champost contaminé, Économies d’énergie par la possibilité de limiter les traitements thermiques particulièrement énergivores et coûteux, grâce à la réduction des maladies, Application par pulvérisation facilement adaptable à toutes les méthodes de production et combinable avec l’utilisation d’autres biostimulants et les suppléments (compléments nutritifs), Application d’une bio-solution pérenne et respectueuse de l’environnement, sur la culture des principaux champignons cultivés dans le monde. L’espèce bactérienne Bacillus siamensis formulée dans le cadre de l’invention, peut être utilisée de manière simple et efficace dans les méthodes classiques de production des champignons, sans qu’il soit nécessaire de complexifier ces méthodes. Avantageusement, la souche bactérienne est sous une forme solide telle qu’une poudre ou des granules, ou sous une forme liquide, préférentiellement aqueuse. Un produit contenant la souche bactérienne selon l’invention peut ainsi se présenter sous forme liquide, comme une suspension concentrée (SC), ou sous forme solide, comme une poudre sèche obtenue par fermentation en bioréacteur puis par séchage par atomisation (spray-drying) ou par l’ajout d’un cryoprotecteur avant lyophilisation (freeze-drying). La poudre sèche peut prendre la forme d’une poudre mouillable (WP ou WDP = Water Dispersible Powder) ou de granulés solubles (WG ou WDG = Water Dispersible Granules). L’espèce Bacillus siamensis peut éventuellement être produite sous une des formes décrites précédemment, puis ensuite être encapsulée. À titre d’exemple, la poudre soluble contenant des cellules déshydratées de bactérie est préparée comme suit : - Sortie de cryoconservation de la souche bactérienne, - Repiquage de la souche sur milieux de culture PDA, - Croissance de la souche en incubateur à 37°C, - Mise en solution nutritive en bioréacteur de 5 litres, - Centrifugation de la solution après un cycle de 48h, - Récupération et lavage du culot, - Pulvérisation de l’entrant liquide en chambre d’atomisation, - Séchage sous pression réduite, - Obtention d’une poudre sèche, - Conditionnement. Préférentiellement, le mycélium ou le champignon est choisi parmi les basidiomycètes, en particulier le champignon de Paris, les pleurotes et le shiitake, plus particulièrement Agaricus bisporus , Pleurotus ostreatus , Pleurotus eryngii et Lentinula edodes . L’invention concerne encore une méthode de culture de champignons comprenant les étapes suivantes : (a) préparation d’un substrat de fructification, (b) ensemencement du substrat de fructification par un inoculum de mycélium, (c) incubation, (d) éventuellement, préparation de terre de gobetage, (e) éventuellement, gobetage, (f) éventuellement, griffage, (g) fructification, (h) récoltes, (i) fin de récolte, la méthode étant caractérisée en ce qu’une souche bactérienne de Bacillus siamensis, ou la souche bactérienne isolée de l’espèce Bacillus siamensis déposée auprès de la CNCM sous le numéro d’ordre CNCM I-5921, ou une composition en comprenant, est appliquée au moins une fois lors d’au moins l’une des étapes (a) à (i). Préférentiellement selon cette méthode, la souche bactérienne est appliquée sous la forme d’une solution liquide. Préférentiellement encore, la souche bactérienne est appliquée par arrosage ou par pulvérisation. Préférentiellement enfin, la souche bactérienne est appliquée dans la masse du substrat ou à la surface des cultures d’un champignon de façon à ce que la concentration soit comprise entre 10 3 cellules / m 2 et 10 12 cellules / m 2 ou entre 10 3 cellules et 10 12 cellules pour 30L du substrat. L’invention concerne encore l’utilisation du compost de fin de culture d’un champignon obtenu par la méthode décrite précédemment comme amendement ou fertilisant pour une culture agricole. L’invention concerne encore l’utilisation d’une souche bactérienne de Bacillus siamensis , ou d’une souche isolée de Bacillus déposée auprès de la CNCM sous le numéro d’ordre CNCM I-5921, pour métaboliser, ou biodégrader, l’octénol produit par un mycélium ou un champignon. L’invention concerne encore l’utilisation d’une souche bactérienne de Bacillus siamensis , ou d’une souche isolée de Bacillus déposée auprès de la CNCM sous le numéro d’ordre CNCM I-5921, pour prévenir la synthèse de l’éthylène produit par un mycélium ou par un champignon. Les caractéristiques de l'invention mentionnées ci-dessus, ainsi que d'autres, apparaîtront plus clairement à la lecture de la description suivante d'exemples de réalisation. Exemple 1 : Évaluation de l’impact de la souche bactérienne CNCM I-5921 appliquée selon l’invention sur les rendements des récoltes d’Agaricus bisporus 1.1 Préparation d’une solution comprenant la souche selon l’invention. Une solution est formulée à partir des éléments suivants : Micro-organisme : Souche bactérienne Bacillus siamensis déposée auprès de la CNCM sous le numéro d’ordre CNCM I-5921 sous la forme d’une poudre sèche, obtenue par séchage par atomisation. La poudre sèche est obtenue comme suit : multiplication de la souche bactérienne par fermentation, séchage par atomisation en fin de fermentation, conditionnement. La poudre sèche obtenue est destinée à être mise en solution avec de l’eau avant application. Celle-ci sera nommée dans la suite « solution CNCM I-5921 ». 1.2 Protocole expérimental d’application sur la terre de gobetage Application de la solution CNCM I-5921 en phase de production de champignons Inoculation de parcelles de 9 kg de compost (représentant chacune 0,1 m 2 de culture de champignons) avec 72 g de mycélium non-traité. Incubation des parcelles pendant 13 jours. Dépôt de 3000 mL de terre de gobetage (90 % de tourbe noire et 10 % de carbonate de calcium) sur une épaisseur de 3 cm, sur chaque parcelle. Griffage de la terre de gobetage, 7 jours après gobetage. Pulvérisation sur la terre de gobetage, 7 jours après gobetage, de la solution CNCM I-5921 (telle que décrite au point 1.1 ), de façon à obtenir une concentration de 2.10 9 , 5.10 9 et 1.10 10 cellules / m 2 , solubilisée dans 150 mL d’eau par parcelle. Post-incubation des parcelles pendant 10 jours. Début de l’induction de la fructification de la première volée. Récolte, comptage du nombre de champignons, pesée et mesure des rendements des 3 volées. Chaque modalité décrite précédemment a été conduite sur 6 parcelles expérimentales identiques, correspondant donc à 6 répétitions. La souche de mycélium utilisée pour l’ensemble des essais expérimentaux est la variété commerciale d’ Agaricus bisporus de marque Delta, produite par la société américaine Amycel. 1.3 Résultats Le tableau 1 ci-dessous présente les rendements mesurés, en kilogrammes de champignons sains par mètre carré de culture, des différentes modalités expérimentées décrites précédemment. Tous les rendements sont également exprimés en pourcentage, rapportés à la modalité témoin. [Tab.1] Traitement appliqué Dosage appliqué par pulvérisation Volée 1 (Kg / m 2 ) % / témoin Volées 1+2 (Kg / m 2 ) % / témoin Volées 1+2+3 (Kg / m 2 ) % / témoin Aucun Témoin 11,23 b - 18,33 b - 23,15 b - CNCM I-5921 2.10 9 cellules / m 2 11,57 b + 3,03 % 20,29 ab + 10,69 % 24,90 ab + 7,56 % CNCM I-5921 5.10 9 cellules / m 2 12,06 ab + 7,39 % 20,10 ab + 9,66 % 25,87 ab + 11,75 % CNCM I-5921 1.10 10 cellules / m 2 12,96 ab + 15,41 % 21,68 ab + 18,28 % 27,98 a + 20,86 % Test de Newman-Keuls (seuil 5%) Le tableau 2 ci-dessous présente le nombre de champignons comptabilisés, en unité par mètre carré de culture, pour chaque modalité expérimentée décrite précédemment. Les nombres de champignons récoltés sont également exprimés en pourcentage, rapportés à la modalité témoin. [Tab.2] Traitement appliqué Dosage appliqué par pulvérisation Volée 1 (Nb / m 2 ) % / témoin Volées 1+2 (Nb / m 2 ) % / témoin Volées 1+2+3 (Nb / m 2 ) % / témoin Aucun Témoin 612 bc - 1065 b - 1415 b - CNCM I-5921 2.10 9 cellules / m 2 572 c - 6,54 % 1110 b + 4,23 % 1448 b + 2,33 % CNCM I-5921 5.10 9 cellules / m 2 722 abc + 17,97 % 1237 ab + 16,15 % 1677 ab + 18,52 % CNCM I-5921 1.10 10 cellules / m 2 763 abc + 24,67 % 1300 ab + 22,07 % 1745 ab + 23,32 % Test de Newman-Keuls (seuil 5%) Selon les résultats des essais expérimentaux de l’Exemple 1, il peut être observé une amélioration nette des rendements, lorsque la solution CNCM I-5921 est appliquée sur la terre de gobetage. L’augmentation des doses appliquées par pulvérisation se traduit par une amélioration des rendements de champignons, statistiquement significative (Test de Newman-Keuls au seuil de risque de 5%), avec une augmentation de 21 % en fin de culture à la concentration de 1.10 10 cellules / m 2 . Le nombre de champignons récoltés augmente également par l’action de la solution CNCM I-5921, à mesure que la dose d’application s’élève. La solution CNCM I-5921 permet donc aux champignonnistes d’optimiser la valorisation des matières premières entrant dans la composition de leurs substrats de culture, mais aussi de faire des économiques d’énergie. La solution CNCM I-5921 leur assure aussi des rendements suffisants dès les premières récoltes pour raccourcir leur cycle de production et éviter l’apparition de maladies qui impliquerait l’utilisation de méthodes énergivores ou de produits phytosanitaires polluants et aujourd’hui inefficaces. En conclusion, la solution CNCM I-5921 appliquée par simple pulvérisation, permet d’augmenter les rendements en culture de champignons, dès les premières récoltes. Son action biologique permet une valorisation optimisée des matières premières et des économies d’énergies au cours de la culture, mais aussi en évitant la prolifération de maladies pour lesquelles les champignonnistes n’ont plus de solutions pérennes. Exemple 2 : Évaluation de l’impact de la souche bactérienne CNCM I-5921 appliquée selon l’invention sur les rendements des récoltes d’Agaricus bisporus en présence du pathogène Dactylium dendroides 2.1 Protocole expérimental d’application sur la terre de gobetage Application de la solution CNCM I-5921 en phase de production de champignons Inoculation de parcelles de 9 kg de compost (représentant chacune 0,1 m 2 de culture de champignons) avec 72 g de mycélium non-traité. Incubation des parcelles pendant 13 jours. Dépôt de 3000 mL de terre de gobetage (90 % de tourbe noire et 10 % de carbonate de calcium) sur une épaisseur de 3 cm, sur chaque parcelle. Griffage de la terre de gobetage, 7 jours après gobetage. Pulvérisation sur la terre de gobetage, 7 jours après gobetage, de la solution CNCM I-5921 (telle que décrite au point 1.1 ), de façon à obtenir une concentration de 2.10 9 cellules / m 2 , solubilisée dans 150 mL d’eau par parcelle. Pulvérisation sur la terre de gobetage, 9 jours après gobetage, du fongicide Vivando®, de façon à obtenir une concentration de 1 mL / m 2 , solubilisé dans 150 mL d’eau par parcelle. Pulvérisation sur la terre de gobetage, 11 jours après gobetage, d’une solution comprenant des spores du pathogène Dactylium dendroides , de façon à obtenir une concentration de 2.10 6 spores / m 2 , solubilisée dans 150 mL d’eau par parcelle. Post-incubation des parcelles pendant 10 jours. Début de l’induction de la fructification de la première volée. Récolte, comptage du nombre de foyers infectieux, pesée et mesure des rendements des 3 volées. Chaque modalité décrite précédemment a été conduite sur 6 parcelles expérimentales identiques, correspondant donc à 6 répétitions. La souche de mycélium utilisée pour l’ensemble des essais expérimentaux est la variété commerciale d’ Agaricus bisporus de marque Delta, produite par la société américaine Amycel. 2.2 Résultats Le tableau 3 ci-dessous présente les rendements mesurés, en kilogrammes de champignons sains par mètre carré de culture, des différentes modalités expérimentées décrites précédemment. Tous les rendements sont également exprimés en pourcentages, rapportés à la modalité témoin. [Tab.3] Traitement appliqué Dosage appliqué par pulvérisation Volée 1 (Kg / m 2 ) % / témoin Volées 1+2 (Kg / m 2 ) % / témoin Volées 1+2+3 (Kg / m 2 ) % / témoin Aucun Témoin 13,36 - 19,64 - 20,46 - Vivando® 1 mL / m 2 14,20 + 6,29 % 20,23 + 3,00 % 21,03 + 2,79 % CNCM I-5921 2.10 9 cellules / m 2 13,67 + 2,32 % 20,01 + 1,88 % 21,14 + 3,32 % Le tableau 4 ci-dessous présente le nombre de toiles apparues, ou foyers du pathogène Dactylium dendroides , en unité par mètre carré de culture, pour chaque modalité expérimentée décrite précédemment. Les nombres de toiles apparues sont également exprimés en pourcentages, rapportés à la modalité témoin. [Tab.4] Traitement appliqué Dosage appliqué par pulvérisation Volée 1 (Toiles / m 2 ) % / témoin Volées 1+2 (Toiles / m 2 ) % / témoin Volées 1+2+3 (Toiles / m 2 ) % / témoin Aucun Témoin 3,33 - 25,00 - 38,33 - Vivando® 1 mL / m 2 1,67 - 49,85 % 26,67 + 6,68 % 41,67 + 8,71 % CNCM I-5921 2.10 9 cellules / m 2 5,00 + 50,15 % 21,67 - 13,32 % 35,00 - 8,69 % Selon les résultats des essais expérimentaux de l’Exemple 2, il peut être observé que l’application de la solution CNCM I-5921 permet de maintenir des rendements de champignons sains, supérieurs au fongicide Vivando® en fin de culture. Une seule pulvérisation de la solution CNCM I-5921 à une concentration faible de 2.10 9 cellules / m 2 , permet d’abaisser la pression maladie après les 2 premières volées (-13%), jusqu’en fin de culture (-9%). Il est à noter que le Vivando®, fongicide à base de métrafénone, n’a montré aucune efficacité dans cet essai expérimental. En conclusion, la souche selon l’invention permet, en présence du pathogène Dactylium dendroides , de maintenir des rendements de champignons sains supérieurs tout en réduisant le nombre d’apparitions de foyers infectieux, particulièrement redoutés en l’absence de solutions efficaces pour les champignonnistes. Exemple 3 : Évaluation de l’impact de la souche bactérienne CNCM I-5921 appliquée selon l’invention sur les rendements des récoltes d’Agaricus bisporus en présence du pathogène Dactylium dendroides 3.1 Protocole expérimental d’application sur la terre de gobetage Application de la solution CNCM I-5921 en phase de production de champignons Inoculation de parcelles de 9 kg de compost (représentant chacune 0,1 m 2 de culture de champignons) avec 72 g de mycélium non-traité. Incubation des parcelles pendant 13 jours. Dépôt de 3000 mL de terre de gobetage (90 % de tourbe noire et 10 % de carbonate de calcium) sur une épaisseur de 3 cm, sur chaque parcelle. Griffage de la terre de gobetage, 7 jours après gobetage. Pulvérisation sur la terre de gobetage, 7 jours après gobetage, de la solution CNCM I-5921 (telle que décrite au point 1.1 ), de façon à obtenir une concentration de 2.10 9 cellules / m 2 , solubilisée dans 150 mL d’eau par parcelle. Pulvérisation sur la terre de gobetage, 9 jours après gobetage, du fongicide Sporgon®, de façon à obtenir une concentration de 1 g / m 2 , solubilisé dans 150 mL d’eau par parcelle. Pulvérisation sur la terre de gobetage, 11 jours après gobetage, d’une solution comprenant des spores du pathogène Dactylium dendroides , de façon à obtenir une concentration de 5.10 6 spores / m 2 , solubilisée dans 150 mL d’eau par parcelle. Post-incubation des parcelles pendant 10 jours. Début de l’induction de la fructification de la première volée. Pulvérisations sur la terre de gobetage, de 1 à 3 fois supplémentaires selon les modalités (tel que détaillé au point 3.2 ), de la solution CNCM I-5921, de façon à obtenir une concentration de 2.10 9 cellules / m 2 , solubilisée dans 150 mL d’eau par parcelle et par application. Récolte, comptage du nombre de foyers infectieux, pesée et mesure des rendements des 3 volées. Chaque modalité décrite précédemment a été conduite sur 6 parcelles expérimentales identiques, correspondant donc à 6 répétitions. La souche de mycélium utilisée pour l’ensemble des essais expérimentaux est la variété commerciale d’ Agaricus bisporus de marque Delta, produite par la société américaine Amycel. 3.2 Résultats Le tableau 5 ci-dessous présente les rendements mesurés, en kilogrammes de champignons sains par mètre carré de culture, des différentes modalités expérimentées décrites précédemment. Tous les rendements sont également exprimés en pourcentages, rapportés à la modalité témoin. [Tab.5] Traitement appliqué Dosage appliqué par pulvérisation Nombre applications Volée 1 (Kg / m 2 ) % / témoin Volées 1+2 (Kg / m 2 ) % / témoin Volées 1+2+3 (Kg / m 2 ) % / témoin Aucun Témoin 0 12,04 - 22,58 b - 25,11 b - Sporgon® 1 g / m 2 1 12,01 - 0,25 % 24,79 a + 9,79 % 29,29 a + 16,65 % CNCM I-5921 2.10 9 cellules / m 2 1 11,91 - 1,08 % 24,29 a + 7,57 % 26,98 ab + 7,45 % CNCM I-5921 2.10 9 cellules / m 2 2 11,40 - 5,32 % 23,55 ab + 4,30 % 26,92 ab + 7,21 % CNCM I-5921 2.10 9 cellules / m 2 3 11,84 - 1,66 % 23,25 ab + 2,97 % 26,00 b + 3,54 % CNCM I-5921 2.10 9 cellules / m 2 4 11,60 - 3,65 % 22,37 b - 0,01 % 25,63 b + 2,07 % Test de Newman-Keuls (seuil 5%) Le tableau 6 ci-dessous présente le nombre de toiles apparues, ou foyers du pathogène Dactylium dendroides , en unité par mètre carré de culture, pour chaque modalité expérimentée décrite précédemment. Les nombres de toiles apparues sont également exprimés en pourcentages, rapportés à la modalité témoin. [Tab.6] Traitement appliqué Dosage appliqué par pulvérisation Nombre applications Volée 1 (Toiles / m 2 ) % / témoin Volées 1+2 (Toiles / m 2 ) % / témoin Volées 1+2+3 (Toiles / m 2 ) % / témoin Aucun Témoin 0 3,33 - 6,67 - 38,33 - Sporgon® 1 g / m 2 1 0,00 - 100,00 % 0,71 - 89,36 % 26,70 - 30,34 % CNCM I-5921 2.10 9 cellules / m 2 1 0,00 - 100,00 % 3,33 - 50,07 % 41,67 + 8,71 % CNCM I-5921 2.10 9 cellules / m 2 2 1,67 - 49,85 % 3,33 - 50,07 % 38,33 ± 0,00 % CNCM I-5921 2.10 9 cellules / m 2 3 1,67 - 49,85 % 5,00 - 25,04 % 38,33 ± 0,00 % CNCM I-5921 2.10 9 cellules / m 2 4 0,00 - 100,00 % 4,04 - 39,43 % 35,87 - 6,42 % Selon les résultats des essais expérimentaux de l’Exemple 3, il peut être observé qu’une application de la solution CNCM I-5921 permet de maintenir des rendements de champignons sains, statistiquement comparables au fongicide Sporgon® en fin de 2 ème volée (Test de Newman-Keuls au seuil de risque de 5%). Une seule pulvérisation permet en effet d’assurer 77 % du maintien de rendements permis par l’application du Sporgon® après 2 volées, et 45 % en fin de culture. Une seule pulvérisation de la solution CNCM I-5921 à une concentration faible de 2.10 9 cellules / m 2 , permet d’abaisser la pression maladie après les 2 premières récoltes (-50%). Il est à noter que le Sporgon®, fongicide à base de prochloraz-Mn, n’est plus autorisé dans l’Union Européenne depuis 2021. En conclusion, la souche selon l’invention permet, en présence du pathogène Dactylium dendroides , de maintenir des rendements de champignons sains supérieurs tout en réduisant le nombre d’apparitions de foyers d’infectieux, particulièrement redoutés en l’absence de solutions efficaces pour les champignonnistes. Exemple 4 : Évaluation de l’impact de la souche bactérienne CNCM I-5921 appliquée selon l’invention sur les rendements des récoltes d’Agaricus bisporus en présence du pathogène Dactylium dendroides 4.1 Protocole expérimental d’application sur la terre de gobetage Application de la solution CNCM I-5921 en phase de production de champignons Inoculation de parcelles de 9 kg de compost (représentant chacune 0,1 m 2 de culture de champignons) avec 72 g de mycélium non-traité. Incubation des parcelles pendant 13 jours. Dépôt de 3000 mL de terre de gobetage (90 % de tourbe noire et 10 % de carbonate de calcium) sur une épaisseur de 3 cm, sur chaque parcelle. Griffage de la terre de gobetage, 7 jours après gobetage. Pulvérisation sur la terre de gobetage, 7 jours après gobetage, de la solution CNCM I-5921 (telle que décrite au point 1.1 ), de façon à obtenir une concentration de 5.10 9 et 1.10 10 cellules / m 2 , solubilisée dans 150 mL d’eau par parcelle. Pulvérisation sur la terre de gobetage, 9 jours après gobetage, du fongicide Sporgon®, de façon à obtenir une concentration de 1 g / m 2 , solubilisé dans 150 mL d’eau par parcelle. Pulvérisation sur la terre de gobetage, 11 jours après gobetage, d’une solution comprenant des spores du pathogène Dactylium dendroides , de façon à obtenir une concentration de 4.10 6 spores / m 2 , solubilisée dans 150 mL d’eau par parcelle. Post-incubation des parcelles pendant 10 jours. Début de l’induction de la fructification de la première volée. Pulvérisation sur la terre de gobetage, en fin de 1 ère volée (tel que détaillé au point 4.2 ), de la solution CNCM I-5921, de façon à obtenir une concentration de 5.10 9 et 1.10 10 cellules / m 2 , solubilisée dans 150 mL d’eau par parcelle. Récolte, comptage du nombre de foyers infectieux, pesée et mesure des rendements des 3 volées. Chaque modalité décrite précédemment a été conduite sur 6 parcelles expérimentales identiques, correspondant donc à 6 répétitions. La souche de mycélium utilisée pour l’ensemble des essais expérimentaux est la variété commerciale d’ Agaricus bisporus de marque Delta, produite par la société américaine Amycel. 4.2 Résultats Le tableau 7 ci-dessous présente les rendements mesurés, en kilogrammes de champignons sains par mètre carré de culture, des différentes modalités expérimentées décrites précédemment. Tous les rendements sont également exprimés en pourcentages, rapportés à la modalité témoin. [Tab.7] Traitement appliqué Dosage appliqué par pulvérisation Nombre applications Volée 1 (Kg / m 2 ) % / témoin Volées 1+2 (Kg / m 2 ) % / témoin Volées 1+2+3 (Kg / m 2 ) % / témoin Aucun Témoin 0 11,67 - 18,40 - 20,40 - Sporgon® 1 g / m 2 1 11,26 - 3,51 % 19,44 + 5,65 % 23,12 + 13,33 % CNCM I-5921 5.10 9 cellules / m 2 1 11,69 + 0,17 % 19,24 + 4,57 % 22,19 + 8,77 % CNCM I-5921 1.10 10 cellules / m 2 1 11,12 - 4,71 % 18,39 - 0,05 % 21,62 + 5,98 % CNCM I-5921 5.10 9 cellules / m 2 2 11,50 - 1,46 % 18,50 + 0,54 % 21,93 + 7,50 % CNCM I-5921 1.10 10 cellules / m 2 2 11,58 - 0,77 % 17,64 - 4,13 % 20,51 + 0,54 % Le tableau 8 ci-dessous présente le nombre de toiles apparues, ou foyers du pathogène Dactylium dendroides , en unité par mètre carré de culture, pour chaque modalité expérimentée décrite précédemment. Les nombres de toiles apparues sont également exprimés en pourcentages, rapportés à la modalité témoin. [Tab.8] Traitement appliqué Dosage appliqué par pulvérisation Nombre applications Volée 1 (Toiles / m 2 ) % / témoin Volées 1+2 (Toiles / m 2 ) % / témoin Volées 1+2+3 (Toiles / m 2 ) % / témoin Aucun Témoin 0 1,67 - 16,67 a - 25,00 a - Sporgon® 1 g / m 2 1 0,00 - 100,00 % 0,00 b - 100,00 % 1,67 b - 93,32 % CNCM I-5921 5.10 9 cellules / m 2 1 1,67 ± 0,00 % 1,67 b - 89,98 % 16,67 ab - 33,32 % CNCM I-5921 1.10 10 cellules / m 2 1 1,67 ± 0,00 % 3,33 b - 80,02 % 18,33 ab - 26,68 % CNCM I-5921 5.10 9 cellules / m 2 2 0,00 - 100,00 % 1,67 b - 89,98 % 10,00 ab - 60,00 % CNCM I-5921 1.10 10 cellules / m 2 2 3,33 + 99,40 % 8,33 ab - 50,03 % 11,67 ab - 53,32 % Test de Newman-Keuls (seuil 5%) Selon les résultats des essais expérimentaux de l’Exemple 4, il peut être observé qu’une application de la solution CNCM I-5921 permet de maintenir des rendements de champignons sains, comparables au fongicide Sporgon® en fin de 2 ème volée. Une seule pulvérisation à 5.10 9 cellules / m 2 permet en effet d’assurer 81 % du maintien de rendements permis par l’application du Sporgon® après 2 volées, et 65 % en fin de culture. Dans le même temps, cette unique application à 5.10 9 cellules / m 2 a permis d’abaisser significativement la pression maladie de 90 %, comparativement au Sporgon® en fin de 2 ème volée (Test de Newman-Keuls au seuil de risque de 5%), et de 64 % en fin de culture après une 2 ème application. Cette découverte est particulièrement importante et singulière, car elle démontre que la solution CNCM I-5921 a également un potentiel curatif sur une culture de champignons déjà infectée, ce qui est sans antécédents. En effet, la 2 ème application tardive à 5.10 9 cellules / m 2 a été réalisée après la 1 ère volée, en présence de plusieurs foyers infectieux, témoignant de la précocité et de la virulence d’un pathogène fongique déjà bien installé. En conclusion, la souche selon l’invention permet, en présence du pathogène Dactylium dendroides , de maintenir des rendements de champignons sains supérieurs tout en réduisant significativement le nombre d’apparitions de foyers infectieux, y compris en applications curatives post-infection. Exemple 5 : Évaluation de l’impact de la souche bactérienne CNCM I-5921 appliquée selon l’invention sur les rendements des récoltes d’Agaricus bisporus en présence du pathogène Verticillium fungicola 5.1 Protocole expérimental d’application sur la terre de gobetage Application de la solution CNCM I-5921 en phase de production de champignons Inoculation de parcelles de 9 kg de compost (représentant chacune 0,1 m 2 de culture de champignons) avec 72 g de mycélium non-traité. Incubation des parcelles pendant 13 jours. Dépôt de 3000 mL de terre de gobetage (90 % de tourbe noire et 10 % de carbonate de calcium) sur une épaisseur de 3 cm, sur chaque parcelle. Griffage de la terre de gobetage, 7 jours après gobetage. Pulvérisation sur la terre de gobetage, 7 jours après gobetage, de la solution CNCM I-5921 (telle que décrite au point 1.1 ), de façon à obtenir une concentration de 2.10 5 et 2.10 9 cellules / m 2 , solubilisée dans 150 mL d’eau par parcelle. Pulvérisation sur la terre de gobetage, 9 jours après gobetage, du fongicide Sporgon®, de façon à obtenir une concentration de 1 g / m 2 , solubilisé dans 150 mL d’eau par parcelle. Pulvérisation sur la terre de gobetage, 11 jours après gobetage, d’une solution comprenant des spores du pathogène Verticillium fungicola , de façon à obtenir une concentration de 2.10 6 spores / m 2 , solubilisé dans 150 mL d’eau par parcelle. Post-incubation des parcelles pendant 10 jours. Début de l’induction de la fructification de la première volée. Récolte, pesée et mesure des rendements de champignons sains et malades des 3 volées. Chaque modalité décrite précédemment a été conduite sur 6 parcelles expérimentales identiques, correspondant donc à 6 répétitions. La souche de mycélium utilisée pour l’ensemble des essais expérimentaux est la variété commerciale d’ Agaricus bisporus de marque Magnum, produite par la société américaine Amycel. 5.2 Résultats Le tableau 9 ci-dessous présente les rendements mesurés, en kilogrammes de champignons sains par mètre carré de culture, des différentes modalités expérimentées décrites précédemment. Tous les rendements sont également exprimés en pourcentages, rapportés à la modalité témoin. [Tab.9] Traitement appliqué Dosage appliqué par pulvérisation Volée 1 (Kg / m 2 ) % / témoin Volées 1+2 (Kg / m 2 ) % / témoin Volées 1+2+3 (Kg / m 2 ) % / témoin Aucun Témoin 14,59 - 19,99 - 20,82 - Sporgon® 1 g / m 2 14,37 - 1,51 % 22,10 + 10,56 % 25,07 + 20,41 % CNCM I-5921 2.10 5 cellules / m 2 15,34 + 5,14 % 20,72 + 3,65 % 21,43 + 2,93 % CNCM I-5921 2.10 9 cellules / m 2 15,03 + 3,02 % 20,58 + 2,95 % 21,47 + 3,12 % Le tableau 10 ci-dessous présente les rendements mesurés, en kilogrammes de champignons malades par mètre carré de culture, des différentes modalités expérimentées décrites précédemment. Tous les rendements sont également exprimés en pourcentage, rapportés à la modalité témoin. [Tab.10] Traitement appliqué Dosage appliqué par pulvérisation Volée 1 (Kg / m 2 ) % / témoin Volées 1+2 (Kg / m 2 ) % / témoin Volées 1+2+3 (Kg / m 2 ) % / témoin Aucun Témoin 0,12 - 1,79 - 4,20 - Sporgon® 1 g / m 2 0,00 - 100,00 % 0,14 - 92,18 % 1,23 - 70,71 % CNCM I-5921 2.10 5 cellules / m 2 0,15 + 25,00 % 1,73 - 3,35 % 3,58 - 14,76 % CNCM I-5921 2.10 9 cellules / m 2 0,10 - 16,67 % 1,22 - 31,84 % 2,84 - 32,38 % Selon les résultats des essais expérimentaux de l’Exemple 5, il peut être observé qu’une application de la solution CNCM I-5921 permet de maintenir des rendements de champignons sains supérieurs au témoin non-traité, tout au long de la culture de champignons. Une seule pulvérisation de la solution CNCM I-5921 à une concentration faible de 2.10 5 à 2.10 9 cellules / m 2 , permet d’abaisser la pression maladie après les 2 premières volées (-32%), jusqu’en fin de culture (-32%). Il est à noter que le Sporgon®, fongicide à base de prochloraz-Mn, n’est plus autorisé dans l’Union Européenne depuis 2021. En conclusion, la souche selon l’invention permet, en présence du pathogène Verticillium fungicola , de maintenir des rendements de champignons sains supérieurs tout en réduisant la masse de champignons malades, qui participent à propager les foyers infectieux au sein des cultures. Exemple 6 : Évaluation de l’impact de la souche bactérienne CNCM I-5921 sur la croissance et le développement des pathogènes Dactylium dendroides , Verticillium fungicola , Mycogone perniciosa et Trichoderma aggressivum . 6.1 Protocole expérimental en conditions de laboratoire Mise en confrontation in vitro de la souche bactérienne CNCM I-5921 avec les principaux pathogènes en culture de champignons Préparation de gélose PDA (Potato Dextrose Agar) coulée en boîtes de Pétri. Mise en incubation des boîtes de Pétri à 23°C pendant 7 jours. Dépôt longitudinal de la souche bactérienne CNCM I-5921 avec une anse. Dépôt d’un inoculum des pathogènes Dactylium dendroides , Verticillium fungicola , Mycogone perniciosa et Trichoderma aggressivum . Incubation des boîtes de Pétri inoculées à 23°C pendant 14 jours. Observation et prise de photos des boîtes de Pétri recto-verso. 6.2 Résultats Les Figures 1 à 4 illustrent l’impact de la souche bactérienne CNCM I-5921 sur la croissance et le développement des pathogènes Dactylium dendroides ( FIG. 1 ), Verticillium fungicola ( FIG. 2 ), Mycogone perniciosa ( FIG. 3 ) et Trichoderma aggressivum ( FIG. 4 ), après 14 jours d’incubation. Selon les résultats des essais expérimentaux de l’Exemple 6, il peut être observé que la souche bactérienne CNCM I-5921 produit un effet particulièrement inhibiteur sur la croissance et le développement des pathogènes Dactylium dendroides , Verticillium fungicola , Mycogone perniciosa et Trichoderma aggressivum après 14 jours d’incubation. Il est notable que cet effet est durable dans le temps, et non sur quelques jours seulement, et qu’il intervient à distance, sans qu’aucun contact direct avec la souche bactérienne CNCM I-5921 soit nécessaire, hormis pour Trichoderma aggressivum . En conclusion, la souche bactérienne CNCM I-5921 se montre particulièrement efficace contre les principaux pathogènes des cultures de champignons, que sont Dactylium dendroides , Verticillium fungicola , Mycogone perniciosa et Trichoderma aggressivum . La souche selon l’invention apporte donc une solution pérenne et respectueuse de l’environnement aux champignonnistes, leur évitant d’avoir à utiliser des fongicides chimiques et d’avoir recours à la stérilisation du matériel et des infrastructures, technique efficace à court terme et particulièrement énergivore. Exemple 7 : Évaluation de l’impact de l’octénol, ou alcool de champignons, sur la souche bactérienne CNCM I-5921. 7.1 Protocole expérimental en conditions de laboratoire Mise en confrontation in vitro de la souche bactérienne CNCM I-5921 avec l’octénol Préparation de gélose PDA (Potato Dextrose Agar) coulée en boîtes de Pétri. Mise en incubation des boîtes de Pétri à 23°C pendant 7 jours. Dépôt-étalement de 0,5 µL, 1µL, 2µL et 4µL d’octénol (CAS n°3391-86-4) avec un râteau. Dépôt longitudinal de la souche bactérienne CNCM I-5921 avec une anse. Incubation des boîtes de Pétri inoculées à 23°C pendant 14 jours. Observation et prise de photos des boîtes de Pétri. 7.2 Résultats La FIG. 5 illustre l’impact de l’octénol, ou alcool de champignons, sur la souche bactérienne CNCM I-5921, après 14 jours d’incubation. Selon les résultats des essais expérimentaux de l’Exemple 7, il peut être observé que l’octénol produit un effet biostimulant sur la croissance et le développement de la souche bactérienne CNCM I-5921. À noter également, que cet effet s’accentue à mesure que le volume d’octénol appliqué augmente, du témoin non-traité (a), à 0,5µL (b), 1µL (c), 2µL (d) et 4µL (e). Cette découverte est particulièrement importante car l’octénol est produit par le mycélium en cours de croissance, et tend à freiner voire bloquer l’initiation fructifère et la formation des primordia lorsqu’il est présent en trop grande quantité. La dispersion de l’excès d’octénol à la surface des cultures, nécessite d’utiliser des ventilateurs qui consomment de l’énergie et ne se montrent pas toujours efficaces. En conclusion, l’octénol biostimule la croissance et le développement de la souche bactérienne CNCM I-5921 qui se montre visiblement capable de le dégrader ou de le métaboliser. Cet aspect est particulièrement intéressant et singulier puisqu’il peut expliquer pourquoi la solution CNCM I-5921 permet d’augmenter significativement les rendements de champignons sains (Exemple 1), y compris en présence de maladies. Souche isolée de l’espèce Bacillus siamensis déposée auprès de la CNCM sous le numéro d’ordre CNCM I-5921. Utilisation de la souche bactérienne selon la revendication 1, pour la stimulation du développement et de la croissance d’un mycélium ou d’un champignon ou l’amélioration des rendements des cultures d’un champignon. Utilisation de la souche bactérienne selon la revendication 1, pour lutter contre le développement des pathogènes des cultures d’un champignon tels que Dactylium dendroides , ou encore nommé Cladobotryum spp., Verticillium fungicola, ou encore nommé Lecanicillium fungicola , Mycogone perniciosa , ou encore nommé Hypomyces perniciosus , et Trichoderma aggressivum , ou encore nommé Trichoderma spp.. Utilisation selon l’une des revendications 2 à 3, dans laquelle la souche bactérienne est sous une forme solide telle qu’une poudre ou des granules, ou sous une forme liquide, préférentiellement aqueuse. Utilisation selon l’une des revendications 2 à 4, dans laquelle le mycélium ou le champignon est choisi parmi les basidiomycètes, en particulier le champignon de Paris, les pleurotes et le shiitake, plus particulièrement Agaricus bisporus , Pleurotus ostreatus , Pleurotus eryngii et Lentinula edodes . Méthode de culture de champignons à partir d’un inoculum de mycélium, comprenant les étapes suivantes : (a) préparation d’un substrat de fructification, (b) ensemencement du substrat de fructification par un inoculum de mycélium, (c) incubation, (d) éventuellement, préparation de terre de gobetage, (e) éventuellement, gobetage, (f) éventuellement, griffage, (g) fructification, (h) récoltes, (i) fin de récolte, caractérisée en ce que la souche bactérienne selon la revendication 1, ou une composition en comprenant, est appliquée au moins une fois lors d’au moins l’une des étapes (a) à (i). Méthode selon la revendication 6, dans laquelle la souche bactérienne est appliquée sous la forme d’une solution liquide. Méthode selon l’une des revendications 6 à 7, dans laquelle la souche bactérienne est appliquée dans la masse du substrat ou à la surface des cultures d’un champignon de façon à ce que la concentration soit comprise entre 10 3 cellules / m 2 et 10 12 cellules / m 2 ou entre 10 3 cellules et 10 12 cellules pour 30L du substrat. Méthode selon l’une des revendications 6 à 8, dans laquelle la souche bactérienne est appliquée par arrosage ou par pulvérisation. Utilisation d’un compost de fin de culture d’un champignon obtenu par une méthode selon la revendication 6 comme amendement ou fertilisant pour une culture agricole. Utilisation d’une souche bactérienne selon la revendication 1, pour métaboliser ou biodégrader l’octénol produit par un mycélium ou par un champignon. Utilisation d’une souche bactérienne selon la revendication 1, pour prévenir la synthèse de l’éthylène produit par un mycélium ou par un champignon.