Brevet FR3159174A1 — publié le 20250815

La présente invention porte sur une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, en particulier sur la protéine de séquence SEQ ID NO : 2 et son utilisation dans la détection de la bactérie Streptococcus uberis . Elle concerne également une bandelette de chromatographie à flux latéral (LFA) comprenant ladite protéine. [Fig. **] PROTEINES POUR LA DETECTION DE STREPTOCOCCUS UBERIS ET DISPOSITIFS DE DETECTION La présente invention porte sur une nouvelle protéine et son utilisation dans la détection de la bactérie Streptococcus uberis. Elle concerne également une bandelette de chromatographie à flux latéral (LFA) comprenant ladite protéine. La mammite est une infection de la mamelle des vaches pendant la période de lactation. Les bactéries responsables sont diverses. Lorsque la mammite bovine est causée par une infection bactérienne, cette maladie est majoritairement due à trois bactéries : Staphylococcus aureus ( S. aureus ), Streptococcus uberis ( S. uberis ) et Escherichia coli ( E. coli ) (Paramanandham et al., 2021). Les pertes économiques sont estimées à 805 millions d’euros en France et à 6 milliards d’euros en Europe (Neculai-Valeanu et al ., 2021). Ces pertes économiques ne sont pas uniquement liées à une perte de rendement et de qualité de lait mais sont aussi liées aux pertes animales dues à l’envoi à l’abattoir des animaux contaminés (Rediger et al. , 2022). S. uberis est l'un des agents pathogènes les plus couramment identifiés, responsables de mammites bovines cliniques et subcliniques (sans symptômes) (Keane OM et al. , 2019). Constituant commun de la flore intestinale bovine, S. uberis peut devenir un agent pathogène opportuniste chez les hôtes dont le système immunitaire est affaibli. S. uberis était principalement classé comme agent environnemental causal de la mammite bovine, mais contagieux (de la vache à vache) (Wente N et al. , 2019). Bien que différentes stratégies d'atténuation des risques, telles que l'amélioration des pratiques de traite, la désinfection des trayons après la traite et l'administration d'antimicrobiens, aient permis de réduire considérablement l'incidence des mammites dérivées d'agents pathogènes contagieux, les souches environnementales de S. uberis continuent de constituer une menace majeure en raison de leur degré élevé de contamination. Le résultat de l'hétérogénéité génétique au sein des populations de S. uberis est que les vaccins conçus contre une souche particulière montrent une faible efficacité contre d'autres (Collado R et al. , 2018). La détection de S. uberis est importante pour la gestion du troupeau mais aussi pour orienter vers le traitement le plus adapté. Lorsque la vache est infectée par une bactérie de Gram positive tel que S. aureus, S. uberis , le traitement par un antibiotique est nécessaire. Par contre, l’efficacité des antibiotiques est différente en fonction de la bactérie. Les antibiotiques tels que les pénicillines G et A sont systématiquement actives contre cette bactérie. Alors que les résistances à la pénicilline et aux bêta-lactamines en général posent des problèmes récurrents dans le traitement d’autres pathogènes tels que les staphylocoques ou les entérobactéries, il est important de détection Streptococcus uberis afin de choisir l’antibiotique adapté. Les dispositifs de diagnostic des mammites présents sur le marché sont principalement basés sur le dépistage des cellules somatiques qu’on retrouve dans le lait. Cette technique peut donner l’indication que la vache est infectée mais elle ne permet pas d’identifier la bactérie responsable. La détection des bactéries responsables est souvent réalisée par la méthode de culture ou par l’approche de biologie moléculaire (PCR). Pour la méthode de culture, celui-ci nécessite des temps d’incubation de 24 h à 48 h, ce qui ne correspond pas aux enjeux du secteur. L’approche par la biologie moléculaire (PCR et/ou PCR quantitative) permet d’avoir une détection plus rapide et plus spécifique mais la technique de PCR détecte seulement la présence d’ADN des bactéries et non les bactéries elles-mêmes, ce qui peut entraîner la détection de faux positifs (bactéries mortes et déjà prises en charge par le système immunitaire de la vache ou par un traitement précédent). Dans tous cas, les deux méthodes nécessitent l’envoie des échantillons au laboratoire. Le nombre d’échantillons doit être important pour être significatif des problèmes rencontrés sur l’exploitation (4 prélèvements par vache x le nombre de vaches suspectées d’être infectées) et représente un coût d’analyse important. La demande WO2021/234321 décrit un dispositif de chromatographie à flux latérale pour la détection de Staphylococcus aureus basée sur l’utilisation de protéines de liaison au récepteur de phage, mais ce dispositif ne permet pas de détecter S. uberis . Il est donc important de développer une méthode de détection rapide de S. uberis , utilisable sur le terrain, ne nécessitant par un appareillage important et couteux, ni l’envoi des échantillons au laboratoire. Résumé Selon un aspect, la présente demande porte sur une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, en particulier elle porte sur la protéine de séquence SEQ ID NO : 2. Selon un autre aspect, la présente demande porte sur une composition comprenant : - une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1, en particulier une protéine de séquence SEQ ID NO :1, et - une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, en particulier une protéine de séquence SEQ ID NO :2. Selon un autre aspect, la présente demande porte sur l’utilisation d’une protéine RBP comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, en particulier l’utilisation de la protéine RBP de séquence SEQ ID NO : 2, pour la capture de Streptococcus uberis dans un échantillon. Selon un autre aspect, la présente demande porte sur l’utilisation d’une composition comprenant : - une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1, en particulier une protéine de séquence SEQ ID NO :1, et - une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, en particulier une protéine de séquence SEQ ID NO :2, pour la capture de Streptococcus uberis dans un échantillon. Selon un autre aspect, la présente demande porte sur l’utilisation d’une protéine RBP comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, en particulier l’utilisation de la protéine RBP de séquence SEQ ID NO : 2 pour la détection de Streptococcus uberis dans un échantillon. Selon un autre aspect, la présente demande porte sur l’utilisation d’une composition comprenant : - une protéine RBP comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1, en particulier une protéine de séquence SEQ ID NO :1, et - une protéine RBP comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, en particulier une protéine de séquence SEQ ID NO :2, pour la détection de Streptococcus uberis dans un échantillon. En particulier, la détection est réalisée par ELISA, chromatographie à flux latéral (LFA) ou chromatographie à flux latéral avec croissance bactérienne. Selon un autre aspect, la présente demande porte sur une bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis dans un échantillon, comprenant au moins une partie qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, ladite au moins une partie comprenant en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :2. En particulier, la présente demande porte sur une bandelette de chromatographie à flux latéral comprenant dans l’ordre : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, en particulier elle comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :2, ladite zone de détection comprenant optionnellement une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :1 ; - une partie absorbante. En particulier, la présente demande porte sur une bandelette de chromatographie à flux latéral, comprenant dans l’ordre : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une partie de marquage comprenant une zone de marquage qui comprend un marqueur ; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, en particulier elle comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :2, ladite zone de détection comprenant optionnellement une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :1 ; - une partie absorbante ; ledit marqueur étant conjugué à un ligand spécifique de S. uberis choisi parmi au moins un anticorps dirigé contre S. uberis, au moins un aptamère spécifique de S. uberis, au moins un bactériophage spécifique de S. uberis, au moins une protéine d’au moins un bactériophage spécifique S. uberis, au moins un bactériophage spécifique de S. uberis couplé à un anticorps dirigé contre S. uberis, au moins une protéine d’un bactériophage spécifique de S. uberis couplée à un anticorps dirigé contre S. uberis, en particulier ladite au moins une protéine d’au moins un bactériophage spécifique de S. uberis est une protéine RBP, plus particulièrement, une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, en particulier il s’agit de la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :2, en particulier ledit marqueur est une nanoparticule d’or ou une bille de latex colorée. En particulier, la présente demande porte sur une bandelette de chromatographie à flux latéral, comprenant dans l’ordre : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une première partie de marquage qui comprend une zone de marquage de S. uberis comprenant un marqueur, en particulier une nanoparticule d’or ou une bille de latex colorée, conjugué à une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :2, ladite zone de marquage comprenant optionnellement un marqueur, en particulier une nanoparticule d’or ou une bille de latex colorée, conjugué à une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :1 ; - une deuxième partie de marquage qui comprend une zone de marquage de S. aureus comprenant un marqueur, en particulier une nanoparticule d’or ou une bille de latex colorée, conjugué à une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 4, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :4 et/ou comprenant un marqueur, en particulier une nanoparticule d’or ou une bille de latex colorée, conjugué à une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :5, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :5; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :2, ladite zone de détection de S. uberis comprenant optionnellement une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :1, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :1, et comprenant une zone de détection de S. aureus qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 4 et/ou qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :5, en particulier la zone de détection de S. aureus comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :4 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :5 ; - une partie absorbante. Selon un aspect, la présente demande porte sur un procédé de détection de S. uberis dans un échantillon comprenant : - une étape de mise en contact de l’échantillon avec la zone de contact d’une bandelette ; - une étape de détection du marqueur sur la zone de détection ; - une étape d’analyse de la présence ou de l’absence de S. uberis dans l’échantillon. Selon un aspect, la présente demande porte sur un procédé de détection de S. uberis comprenant : 1) Addition d’un échantillon à tester dans un milieu nutritif comprenant un élément chromogène ; 2) Mise en contact d’une bandelette LFA avec le mélange obtenu à l’étape 1) ; 3) Migration entre 5 et 45 min, en particulier entre 15 et 35 min, plus particulièrement entre 20 et 30 min, de préférence 30 min ; 4) Incuber la bandelette dans le tube fermé à 37°C pendant 15h à 24h, de préférence entre 17h et 20h ; 5) Apparition d’une coloration le long de la ligne de test en cas de présence de S. uberis dans l’échantillon. Selon un aspect, la présente demande porte sur un procédé de détection de S. uberis et S. aureus dans un échantillon comprenant : - une étape de mise en contact de l’échantillon avec la zone de contact d’une bandelette ; - une étape de détection du marqueur sur la zone de détection ; - une étape d’analyse de la présence ou de l’absence de S. uberis et de la présence ou de l’absence de S. aureus dans l’échantillon. Selon un aspect, la présente demande porte sur un kit de détection de S. uberis comprenant : 1) Une bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis ; 2) Un tube capable de fermer hermétiquement ; 3) Une fiole comprenant le milieu nutritif avec un élément chromogène, en particulier le tellurite de potassium. Selon un aspect, la présente demande porte sur un kit de détection de S. uberis ou de détection de S. uberis et S. aureus comprenant : 1) Une bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis ou une bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis et S. aureus ; 2) Un contenant destiné à recevoir l’échantillon. Fig. 1 FIG. 1 montre les résultats de détection avec un dispositif LFA ou bandelette 1 comprenant sur la zone de marquage 8 la protéine RBP P3 couplée à une nanoparticule d’or (diamètre 40 nm) et sur la ligne de test 5 de la membrane de nitrocellulose, la protéine RBP P3 immobilisé. Bandelette 1 : Solution sans bactérie. Bandelette 2 : solution de S. aureus souche C24B à 1.10 9 cfu/ml. Bandelette 3 : solution de E. coli souche 4ka à 1.10 9 cfu/ml. Bandelette 4 : solution de S. uberis souche Duchesse à 1.10 7 cfu/ml. Bandelette 5 : solution de S. uberis souche S49 à 1.10 7 cfu/ml. Les flèches indiquent la ligne de test sur les bandelettes. (cfu=unité formatrice de colonies) Fig. 2 FIG. 2 montre les résultats de détection avec un dispositif LFA 1 comprenant sur la zone de marquage 8 la protéine RBP SUB4 couplée à une nanoparticule d’or (diamètre 40 nm) et sur la ligne de test 5 de la membrane de nitrocellulose, la protéine RBP SUB4 immobilisé. Bandelette 1 : Solution sans bactérie. Bandelette 2 : solution de S. aureus souche C24B à 1.10 9 cfu/ml. Bandelette 3 : solution de E. coli souche 4ka à 1.10 9 cfu/ml. Bandelette 4 : solution de S. uberis souche Duchesse à 1.10 7 cfu/ml. Bandelette 5 : solution de S. uberis souche S49 à 1.10 7 cfu/ml. Les flèches indiquent la ligne de test sur les bandelettes. Fig. 3 FIG. 3 montre les résultats de détection avec un dispositif LFA 1 comprenant sur la zone de marquage 8 la protéine RBP 28.7 couplée à une nanoparticule d’or (diamètre 40 nm) et sur la ligne de test 5 de la membrane de nitrocellulose, la protéine RBP 28.7 immobilisé. Bandelette 1 : Solution sans bactérie. Bandelette 2 : solution de S. aureus souche C24B à 10 9 cfu/ml. Bandelette 3 : solution de E. coli souche 4ka à 10 9 cfu/ml. Bandelette 4 : solution de S. uberis souche Duchesse à 10 7 cfu/ml. Bandelette 5 : solution de S. uberis souche S49 à 10 7 cfu/ml. Les flèches indiquent la ligne de test sur les bandelettes. Fig. 4 FIG. 4 montre les résultats de détection avec un dispositif LFA 1 comprenant sur la zone de marquage 8 le mélange de deux protéines RBP P3 et SUB4 (DO=5 à 600 nm) couplées à des nanoparticules d’or (diamètre 40 nm). Pour la ligne de contrôle 9, la protéine sur la membrane est VHS/G57 (UniProt : Q08487 / GenBank : CAA52080) à 2,22 mg/ml et sur le conjugué l'anticorps utilisé pour la détection de cette protéine est un monoclonal de souris IgG2b de souris anti-VHS/G57, cet anticorps est couplé à or à DO=2,5. Sur la ligne de test 5 sont immobilisées le mélange de deux protéines RBP P3 (0,625 mg/ml) et SUB4 (0,625 g/ml). Bandelette 1 : Solution sans bactérie. Bandelette 2 : solution de S. aureus souche C24B à 1.10 9 cfu/ml. Bandelette 3 : solution de S. uberis souche Duchesse à 1.10 7 cfu/ml. Bandelette 4 : solution de S. uberis souche Duchesse à 1.10 6 cfu/ml. La flèche A indique la ligne de contrôle. La flèche B indique la ligne de test. Fig. 5 FIG. 5 montre les résultats de détection avec un dispositif LFA 1. A. Zone de marquage 8 comprenant la protéine RBP SUB4 couplée à des nanoparticules d’or (diamètre 40 nm) et la protéine RBP P3 immobilisée sur la ligne de test 5 de la membrane de nitrocellulose. B. Zone de marquage 8 comprenant la protéine RBP SUB4 couplée à des nanoparticules d’or (diamètre 40 nm) et la protéine RBP SUB4 immobilisée sur la ligne de test 5 de la membrane de nitrocellulose. C. Zone de marquage 8 comprenant la protéine RBP SUB4 couplée à des nanoparticules d’or (diamètre 40 nm) et les protéines RBP P3 et SUB4 immobilisées sur la ligne de test 5 de la membrane de nitrocellulose Bandelette 1 : Solution sans bactérie. Bandelette 2 : solution de S. aureus souche C24B. Bandelette 3 : solution de S. uberis souche F17W-PC. Bandelette 4 : solution de S. uberis souche F17W-GC. Bandelette 5 : solution de S. uberis souche 4475B. Bandelette 6 : solution de S. uberis souche 9038. Bandelette 7 : solution de S. uberis souche 2EB1. Bandelette 8 : solution de S. uberis souche 1912c. Bandelette 9 : solution de S. uberis souche 53G. Bandelette 10 : solution de S. uberis souche S52. Les souches sont testées à une DO =1 à 600 nm ce qui équivaut à 1.10 9 cfu/ml pour les souches de S. aureus et 1.10 7 cfu/ml pour les souches de S. uberis . Fig. 6 FIG. 6 montre les résultats de détection avec un dispositif LFA 1 comprenant sur la zone de marquage 8 les protéines RBP SUB4 et P3 couplée à des nanoparticules d’or (diamètre 40 nm) et les protéines RBP P3 et SUB4 immobilisées sur la ligne de test 5 de la membrane de nitrocellulose. 1 : Sans bactérie. 2 : S. aureus (C24B). 3: E. coli (4Ka). 4: S. uberis (16B). 5: S. uberis (304T). 6: S. uberis (4475B). 7: S. uberis (50). 8: S. uberis (2192). 9: S. uberis (9038). 10: S. uberis (Duchesse). 11: S. uberis (Joconde). 12: S. uberis (Galande). 13: S. uberis (1912c). 14: S. uberis (1210). 15: S. uberis (6134). 16: S. uberis (9817a). 17: S. uberis (2EB1). 18: S. uberis (LMG1438b). 19: S. uberis (F17W-CG). 20: S. uberis (F17W-PC). 21: S. uberis (27J). 22: S. uberis (53PG-PC). 23: S. uberis (1912i). 24: S. uberis (S43). 25: S. uberis (S44). 26: S. uberis (S45). 27: S. uberis (S46). 28 : S. uberis (S47). 29: S. uberis (S48). 30: S. uberis (S49). 31: S. uberis (S50). 32: S. uberis (S51). 33: S. uberis (S52). Les souches ont été testés à l’absorbance à DO 600 nm = 1, ce qui équivaut à 1.10 9 cfu/ml pour les souches de S. aureus et 1.10 7 cfu/ml pour les souches de S. uberis . Fig. 7 FIG. 7 montre les résultats de la détection de S. uberis dans un échantillon de lait avec un système LFA et une détection sur gélose. A : Les bandelettes sont directement collées, face nitrocellulose sur une gélose BHI 1X + tellurite 75 µM + 1.5% agar. Une incubation à 37°C pendant 15h est ensuite réalisée avant lecture. Différentes contaminations du lait par S. uberis sont testées : 1= Souche S. uberis Duchess (1.10 4 cfu/ml) ; 2 : Souche S. uberis Duchess (1.10 3 cfu/ml) ; 3 = Souche S. uberis Duchess (1.10 2 cfu/ml) ; 4 = lait NC (sans bactéries). Les flèches indiquent la ligne de test. B : Les bandelettes sont placées dans une cassette et une gélose BHI 1X + tellurite 75 µM +0.4% agar est déposée sur la zone de test 5. La gélose est ensuite scellée avec un adhésif. Une incubation à 37°C pendant 15h est ensuite réalisée avant lecture. 1 = Lait sans bactéries. 2 = lait contaminé par deux souches S. aureus (C24B) 1.10 4 cfu/ml et S. uberis Joconde à 1.10 4 cfu/ml. Fig. 8 FIG. 8 montre les résultats d’un duplex LFA pour la détection simultanée de S. aureus et de S. uberis . Les protéines RBP P3 et SUB4 spécifiques de S. uberis , respectivement de séquence SEQ ID NO :1 et SEQ ID NO :2, ont été déposées sur une ligne de test 5. Ces mêmes protéines ont également été conjuguées avec des nanoparticules d’or et sprayées sur la partie de marquage à DO=5 (6 µl). Les protéines RBP PHIL 2 et PHIL 5 spécifiques de S. aureus , respectivement de séquence SEQ ID NO : 4 et SEQ ID NO : 5, ont été déposées sur une autre ligne de test 5. Ces mêmes protéines ont également été conjuguées avec des nanoparticules d’or et sprayées sur la partie de marquage à DO=5 (6 µl). Quatre échantillons de lait ont été testés : 1) Sans bactérie. 2) lait contaminé avec S. uberis seule, souche Duchesse à DO=1 (1.10 7 cfu/ml). 3. lait contaminé avec S. aureus seule, souche C24B à DO=1 (1.10 9 cfu/ml). 4. Lait contaminé par les deux bactéries. Lors de la migration, le lait contaminé a été dilué 10 fois dans du tampon PBS 1X à 1% de tween. Fig. 9 FIG. 9 montre les résultats d’un duplex LFA pour la détection simultanée de S. aureus et de S. uberis . Les protéines RBP P3 et SUB4 spécifiques de S. uberis , respectivement de séquence SEQ ID NO :1 et SEQ ID NO :2, ont été déposées sur une ligne de test 5. La protéine SUB4 a été conjuguée avec des billes de latex de couleur rouge et sprayées sur la zone de marquage 8 à 0.03% d’extrait sec de billes. Les protéines RBP PHIL 2 et PHIL 5 spécifiques de S. aureus , respectivement de séquence SEQ ID NO : 4 et SEQ ID NO : 5, ont été déposées sur une autre ligne de test 5. Ces mêmes protéines ont été conjuguées avec des billes de latex de couleur bleue et sprayées sur la zone de marquage 8 à 0.5% d’extrait sec de billes pour PHIL 2 et 0.5% d’extrait sec de billes pour PHI 5 (mélange des protéines PHIL 2 et PHIL 5 déposé sur une bandelette). Quatre échantillons de lait ont été testés : 1) Sans bactérie. 2) Lait contaminé avec S. uberis seul, souche Duchesse à DO=10 (10.10 7 cfu/ml). 3) Lait contaminé avec S. aureus seul, souche S41 à DO=10 (10.10 9 cfu/ml). 4) Lait contaminé par le mélange des deux bactéries. Lors de la migration, le lait utilisé a été dilué 10 fois dans du tampon PBS 1X à 1% de tween20. Fig. 10 FIG. 10 montre les résultats d’un duplex LFA pour la détection simultanée de S. aureus et de S. uberis. Les protéines RBP P3 et SUB4 spécifiques de S. uberis , respectivement de séquence SEQ ID NO :1 et SEQ ID NO :2, ont été déposées sur une ligne de test 5. La protéine SUB4 a été conjuguée avec des billes de latex de couleur rouge et sprayées sur la zone de marquage 8 à 0.03% d’extrait sec de billes. Les protéines RBP PHIL 2 et PHIL 5 spécifiques de S. aureus , respectivement de séquence SEQ ID NO : 4 et SEQ ID NO : 5, ont été déposées sur une autre ligne de test 5. Un anticorps anti- S. aureus a été conjuguées avec des billes de latex de couleur bleue et sprayées sur la zone de marquage 8 à 0.3% d’extrait sec de billes. Quatre échantillons de lait ont été testés : 1) Sans bactérie. 2) Lait contaminé avec S. uberis seul, souche Duchesse à DO=10 (10.10 7 cfu/ml). 3) Lait contaminé avec S. aureus seul, souche S41 à DO=10 (10.10 9 cfu/ml). 4) Lait contaminé par le mélange des deux bactéries. Lors de la migration, le lait utilisé a été dilué 10 fois dans du tampon PBS 1X à 1% de tween20. Fig. 11 FIG. 11 montre les résultats d’un dispositif LFA mis en contact avec un échantillon additionné de milieu nutritif et d’un composé chromogène (le tellurite), pour la détection de S. uberis . Les bandelettes ne comportent pas de partie de marquage 7 et comportent dans la partie de détection 4, les protéines RBP P3 et SUB4 spécifiques de S. uberis , respectivement de séquence SEQ ID NO :1 et SEQ ID NO :2, immobilisées sur la ligne de test 5. Les photos des bandelettes sont prises après 15 heures d’incubation à 37°C. Différents échantillons ont été testés : 1) lait non contaminé, 2) Lait cru contaminé avec S. uberis à 1.10 5 cfu/ml, 3) Lait cru contaminé avec S. uberis à 1.10 4 cfu/ml, 4) Lait cru contaminé avec S. uberis à 1.10 3 cfu/ml, 5) Lait cru contaminé avec S. uberis à 1.10 2 cfu/ml, 6) ligne de contrôle, 7) ligne de test de S. uberis . Fig. 12 FIG. 12 montre les résultats d’un dispositif duplex LFA mis en contact avec un échantillon additionné de milieu nutritif et d’un composé chromogène (le tellurite), pour la détection de S. uberis et de S. aureus . Les bandelettes ne comportent pas de partie de marquage 7. Dans la partie de détection 4, les protéines RBP P3 et SUB4 spécifiques de S. uberis , respectivement de séquence SEQ ID NO :1 et SEQ ID NO :2, ont été déposées sur une ligne de test 5. Les protéines RBP PHIL 2 et PHIL 5 spécifiques de S. aureus , respectivement de séquence SEQ ID NO : 4 et SEQ ID NO : 5, ont été déposées sur une autre ligne de test 5. Les photos des bandelettes sont prises après 15 heures d’incubation à 37°C. Différents échantillons ont été testés : 1) lait non contaminé (Ctrl), 2) Lait cru contaminé avec S. aureus, souche 49 à 1.10 5 cfu/ml, 3) Lait cru contaminé avec S. uberis , souche Duchesse à 1.10 5 cfu/ml,4) Lait cru contaminé avec S. uberis à 1.10 5 cfu/ml et S. aureus à 1.10 5 cfu/ml . La flèche A indique la ligne de test. La flèche B indique la ligne de détection de S. uberis (SU). La flèche C indique la ligne de détection de S. aureus (SA). Fig. 13 FIG. 13 montre un schéma d’un test ELISA de type sandwich : 1. Marqueur couplé à un anticorps. 2. Anticorps dirigé contre l’analyte. 3. Analyte (bactérie). 4. Anticorps de capture dirigé contre l’analyte et immobilisé sur le support. Fig. 14 FIG. 14 montre le schéma d’une bandelette 1 de LFA comprenant une partie de contact 2 qui comprend une zone de contact 3, une partie de marquage 7 qui comprend une zone de marquage 8, une partie de détection 4 qui comprend une zone de détection 5 et une zone de contrôle 9, et une partie absorbante 6, plongée dans un échantillon à analyser. Les lignes noires délimitent les différentes parties de la bandelette. Fig. 15 FIG. 15 montre en A le schéma d’une bandelette 1 de LFA comprenant une partie de contact 2 qui comprend une zone de contact 3, une partie de détection 4 qui comprend une zone de détection 5 et une zone de contrôle 9, et une partie absorbante 6. En B, le procédé de détection de S. uberis et S. aureus par la méthode LFA avec détection sur gélose avec une bandelette tel que montré en A comprenant deux lignes de détection (ligne de de test) 5, une pour S. uberis 5.1 et l’autre pour S. aureus 5.2. Après migration de l’échantillon au travers de la bandelette (I), du milieu nutritif contenant de la gélose est déposé (II), puis après fermeture du système et incubation à 37°C (III), le développement de bactéries est observé sur la ligne de test dans le cas où l’échantillon est contaminé par ladite bactérie. Fig. 16 FIG. 16 montre en A le schéma d’une bandelette 1 de LFA comprenant une partie de contact 2 qui comprend une zone de contact 3, une partie de détection 4 qui comprend une zone de détection 5 et une zone de contrôle 9, et une partie absorbante 6. En B, le procédé de détection d’une bactérie d’intérêt par la méthode LFA avec milieu nutritif. La bandelette 1 est plongée dans l’échantillon à tester préalablement mélangé à du milieu nutritif (1). Après migration et incubation, le développement de bactéries est observé sur la ligne de test (2) dans le cas où l’échantillon est contaminé par ladite bactérie. DEFINITIONS Ci-après sont données des définitions qui s’appliquent à l’ensemble de la présente divulgation. Au sens de la présente demande, par « chromatographie à flux latéral » (lateral flow assay, LFA), on entend un dispositif de chromatographie dans lequel un échantillon liquide migre par capillarité dans un flux dirigé au travers d’une bandelette comprenant plusieurs parties. La LFA est connue de l’art antérieure et a notamment été décrite pour la détection immunologique d’un analyte d’intérêt dans un échantillon liquide, grâce à un anticorps primaire et un anticorps secondaire (EP1086372B1 ; US 8 399 261 B2 ; WO 2017/072078 ; Nanerjee and Jaiswal, 2018). Au sens de la présente demande, par « au moins un », on entend un, deux, trois, quatre, cinq, six et suivants. Au sens de la présente demande, un « bactériophage spécifique d’une bactérie d’intérêt » est un bactériophage capable de se lier spécifiquement à cette bactérie. Cette spécificité peut être déterminée par la méthode des spots décrite dans la demande WO2021/234321. Un bactériophage est spécifique d’une bactérie si une plage de lyse est observée autour d’un spot comprenant ledit bactériophage, déposé sur une boite de Pétri recouverte d’une culture de ladite bactérie en phase exponentielle, après 18h d’incubation à une température adaptée à la bactérie. Les protéines de liaison au récepteur de phage (RBP, receptor binding protein) déterminent de la spécificité d’un phage pour une bactérie hôte. Chez les phages, ces protéines se trouvent au niveau de la queue et sont impliquées dans la première étape du cycle d’infection des phages (lytique ou lysogéniques). Elles assurent le contact initial avec le récepteur sur l'enveloppe de la cellule hôte. En effet, les RBP reconnaissent des motifs cibles à la surface des bactéries et permettent ainsi la fixation spécifique d’un phage sur une bactérie hôte. Les RBP de chaque souche de phage sont différentes et déterminent ainsi le spectre d’activité de chaque phage (capacité de reconnaitre plusieurs souches bactérienne). Les protéines RBP sont différentes des domaines de liaison à la paroi cellulaire (CBD, Cell Binding Domain). Les RBP sont impliquées dans la première étape du cycle d’infection des phages, alors que les CBD sont impliquées en fin du cycle d’infection. Les CDB sont des domaines protéiques retrouvées dans des enzymes lytiques produites par les phages, qui permettent la reconnaissance des peptidoglycanes dans les parois cellulaires. Par exemple, l’endolysine est une enzyme produite au stade final du cycle lytique pour cliver la paroi cellulaire bactérienne et libérer le virion descendant. Les endolysines ciblant les bactéries Gram-positives ont généralement une structure modulaire comprenant un domaine enzymatiquement actif (EAD) pour l'hydrolyse et un domaine de liaison à la paroi cellulaire (CBD) pour la reconnaissance des peptidoglycanes. Les endolysines reconnaissent spécifiquement la structure du peptidoglycane (PG) de la bactérie hôte et hydrolysent ensuite la paroi cellulaire en fragments, conduisant à la lyse osmotique des cellules. La spécificité de reconnaissance d’une protéine de phage pour une bactérie peut être établie par la mise en présence de la bactérie et de billes magnétiques recouvertes d’une protéine de phage, suivie de la récupération des billes magnétiques grâce à un support aimanté, puis après resuspension dans un tampon, étalement sur un milieu de culture (en particulier une gélose spécifique). Après 24 à 48h à une température appropriée pour la bactérie, une différence significative entre le dénombrement de colonies bactériennes sur le milieu de culture où les billes magnétiques recouvertes de la protéine ont été étalées et le dénombrement des colonies bactériennes sur un milieu de culture où des billes magnétiques incubées avec la bactérie mais non recouvertes de la protéine, signifie que la protéine de phage est capable de se lier à la bactérie. La spécificité peut également être évaluée par le test ELISA tel décrit dans la demande. Les bactéries sont fixées au fond des puits d'une plaque. Les protéines RBP couplées à une étiquette GTS lors la production de celles-ci, sont déposées dans chaque puit. Après incubation, une étape de lavage est réalisée pour enlever les protéines non fixées. Une étape d’incubation avec un anticorps anti-GTS couplé à HRP ou un autre substrat est alors réalisé pour révéler la présence de la bactérie. Dans la présente demande, les termes « bactériophage » et phage » désignent la même entité, elles sont utilisées de manière indifférente et sont interchangeables. Dans la présente demande, les expressions « anticorps dirigé contre X » et « anticorps anti-X » sont équivalentes et interchangeables. Dans la présente demande, les expressions « X conjugué à Y » et Y conjugué à X » sont équivalentes. Le terme « marqué » signifie « conjugué à un marqueur ». Un premier aspect de l’invention porte sur une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2. En particulier, la présente invention porte sur une protéine de séquence SEQ ID NO : 2. Cette protéine, également appelée SUB4 dans la présente demande, est une protéine RBP d’un bactériophage spécifique de S. uberis . Un deuxième aspect de l’invention porte sur une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1. En particulier, la présente invention porte sur une protéine de séquence SEQ ID NO : 1. Cette protéine, également appelée P3 dans la présente demande, est une protéine RBP d’un bactériophage spécifique de S. uberis . Un troisième aspect de l’invention porte sur une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 3. En particulier, la présente invention porte sur une protéine de séquence SEQ ID NO : 3. Cette protéine, également appelée 28.7 dans la présente demande, est une protéine RBP d’un bactériophage spécifique de S. uberis . Au sens de la présente demande, un pourcentage d’identité d’au moins 70%, peut être en particulier d’au moins 75%, d’au moins 80%, d’au moins 85%, plus particulièrement d’au moins 90% voire d’au moins 95%. Cette définition s’applique en particulier pour les protéines ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec l’une des protéines de séquence SEQ ID NO :1, SEQ ID NO :2 et SEQ ID NO :3, telles que décrites ci-dessus, ainsi qu’aux protéines ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec l’une des protéines de séquence SEQ ID NO :4 ou de séquence SEQ ID NO :5 telles que décrites plus loin. Un quatrième aspect de l’invention porte sur une composition comprenant : - une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1, et - une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2. En particulier, ladite composition comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et la protéine de séquence SEQ ID NO :2. Ladite composition peut comprendre en plus une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 3. En particulier, ladite composition comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :1, la protéine de séquence SEQ ID NO :2 et la protéine de séquence SEQ ID NO :3. Un cinquième aspect de l’invention porte sur l’utilisation d’une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et /ou d’une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, et /ou d’une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 3, pour la capture de la bactérie S. uberis dans un échantillon. Au sens de la présente demande, un échantillon désigne toute solution susceptible de contenir la bactérie d’intérêt. L’échantillon peut être dilué dans une solution tampon préalablement à la mise en œuvre du procédé de détection. En particulier, l’invention porte sur l’utilisation de la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et/ou de la protéine de séquence SEQ ID NO :2, et/ou de la protéine de séquence SEQ ID NO :3 pour la capture de la bactérie S. uberis . En particulier, l’invention porte sur l’utilisation d’une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2 pour la capture de la bactérie S. uberis dans un échantillon, plus particulièrement sur l’utilisation de la protéine de séquence SEQ ID NO :2 pour la capture de la bactérie S. uberis dans un échantillon. En particulier, l’invention porte sur l’utilisation d’une composition comprenant : - une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1, et - une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2 pour la capture de la bactérie S. uberis dans un échantillon, plus particulièrement sur l’utilisation d’une composition comprenant la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et la protéine de séquence SEQ ID NO :2 pour la capture de la bactérie S. uberis dans un échantillon. Ladite composition peut comprendre en plus une protéine de liaison au récepteur (RBP) d’un bactériophage spécifique de S. uberis , comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 3, en particulier elle peut comprendre en plus la protéine de séquence SEQ ID NO :3. Un sixième aspect de l’invention porte sur l’utilisation d’une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et /ou d’une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, et /ou d’une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 3, pour la détection de la bactérie S. uberis dans un échantillon. En particulier, l’invention porte sur l’utilisation de la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et/ou de la protéine de séquence SEQ ID NO :2, et/ou de la protéine de séquence SEQ ID NO :3 pour la détection de la bactérie S. uberis . En particulier, l’invention porte sur l’utilisation d’une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2 pour la détection de la bactérie S. uberis dans un échantillon, plus particulièrement sur l’utilisation de la protéine de séquence SEQ ID NO :2 pour la détection de la bactérie S. uberis dans un échantillon. En particulier, l’invention porte sur l’utilisation d’une composition comprenant : - une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1, et - une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2 pour la détection de la bactérie S. uberis dans un échantillon, plus particulièrement sur l’utilisation d’une composition comprenant la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et la protéine de séquence SEQ ID NO :2 pour la détection de la bactérie S. uberis dans un échantillon. Ladite composition peut comprendre en plus une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 3, en particulier elle peut comprendre en plus la protéine de séquence SEQ ID NO :3. Ladite détection peut être réalisée ELISA, chromatographie à flux latéral ou chromatographie à flux latéral avec croissance bactérienne. Dans un premier mode de réalisation, la détection est réalisée un test ELISA. L'ELISA (enzyme-linked immunosorbent assay,) est un dosage immuno-enzymatique sur support solide, basé sur la réaction spécifique antigène-anticorps. Le principe classique d’un ELISA, dit de type sandwich, est d’utiliser un support, tel qu’une microplaque, sur lequel est immobilisé un ligand spécifique de la bactérie d’intérêt. Après mise en présence du support avec l’échantillon susceptible de contenir la bactérie d’intérêt et rinçage, un anticorps primaire spécifique de la bactérie d’intérêt est ajouté. Cet anticorps primaire est couplé à un marqueur, permettant ainsi la détection de l’analyte en cas de signal. La FIG. 13 illustre la détection par la méthode ELISA. Une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 3, en particulier, la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et/ou de la protéine de séquence SEQ ID NO :2, et/ou de la protéine de séquence SEQ ID NO :3, peuvent être utilisés dans un ELISA comme ligand spécifique sur le support. Il existe également l’ELISA indirect, dans lequel l’anticorps primaire n’est pas couplé à un marqueur, et l’on vient ajouter un anticorps secondaire dirigé contre l’anticorps primaire, qui lui est couplé à un marqueur. Lorsque le marqueur est une enzyme, l’ajout du substrat de l’enzyme permet d’obtenir une réaction colorée dosable par absorbance. Dans un mode alternatif, l’anticorps peut être remplacé par une autre protéine ayant une affinité pour la bactérie d’intérêt. Cela peut par exemple être une protéine RBP. Ainsi, dans un autre mode de réalisation, une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 3, en particulier, la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et/ou de la protéine de séquence SEQ ID NO :2 et/ou de la protéine de séquence SEQ ID NO :3, peuvent être utilisés dans un ELISA pour la détection de S. uberis , en remplacement de l’anticorps de capture et/ou de l’anticorps primaire couplé au marqueur. Dans un deuxième mode de réalisation, la détection est réalisée par chromatographie à flux latéral (LFA). Le principe de la détection par LFA est décrit à l’Exemple 2 et illustré en FIG. 14 . Ainsi, la présente invention porte sur l’utilisation d’une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et/ou d’une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, et/ou d’une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 3, dans une bandelette de chromatographie à flux latéral. En particulier, il s’agit de l’utilisation de la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et/ou de la protéine de séquence SEQ ID NO :2, et/ou de la protéine de séquence SEQ ID NO :3 dans une bandelette de chromatographie à flux latéral. Les bandelettes de chromatographie à flux latéral sont telles que décrites plus loin dans la présente demande. Ladite protéine est utilisée dans au moins une partie de la bandelette LFA. Elle peut être utilisée au niveau de la zone de marquage de la partie de marquage et/ou au niveau de la zone de détection (ligne de test) de la partie de détection. En particulier, la protéine de séquence SEQ ID NO : 2 est utilisée sur la zone de marquage. En particulier, les protéines de séquence SEQ ID NO :1 et SEQ ID NO :2 sont utilisées sur la zone de marquage. En particulier, la protéine de séquence SEQ ID NO : 2 est utilisée sur la zone de détection (ligne de test). En particulier, les protéines de séquence SEQ ID NO :1 et SEQ ID NO :2 sont utilisées sur la zone de détection (ligne de test). Dans un troisième mode de réalisation, la détection est réalisée par chromatographie à flux latéral (LFA) avec croissance bactérienne sur la partie de détection, en particulier au niveau de la zone de détection (ligne de test) qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et/ou d’une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, et/ou d’une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 3. En particulier, la zone de détection comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et/ou de la protéine de séquence SEQ ID NO :2, et/ou de la protéine de séquence SEQ ID NO :3. Plus particulièrement, elle comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :2, et encore plus particulièrement les protéines de séquence SEQ ID NO :1 et SEQ ID NO :2. Ce mode de détection avec croissance bactérienne englobe deux concepts détaillés plus loin : - après migration, ajout de gélose sur la zone de détection, et - avant migration, ajout de l’échantillon dans un milieu nutritif. En particulier, ladite gélose et ledit milieu nutritif comprennent un élément chromogène. Un septième aspect de l’invention porte sur une bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis dans un échantillon. Les modes de réalisation de bandelette de chromatographie à flux latéral décrits ci-après sont décrits avant utilisation de ladite bandelette, c’est-à-dire avant mise en contact avec l’échantillon à analyser. Ainsi, la présente invention concerne une bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis dans un échantillon, comprenant au moins une partie qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :2, et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :3. En particulier, ladite au moins une partie comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :2, et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :3. En particulier, la présente invention concerne une bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis dans un échantillon, comprenant au moins une partie qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, en particulier ladite au moins une partie comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :2. Ladite partie comprenant ladite protéine peut être une partie de marquage et/ou une partie de détection. Dans un mode de réalisation, la partie comprenant la protéine est une partie de détection. Ainsi, dans un mode de réalisation particulier, ladite bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis dans un échantillon, comprend dans l’ordre au moins : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :2, et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :3, en particulier la zone de détection comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :2, et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :3, - une partie absorbante. En particulier, la bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis dans un échantillon, comprend dans l’ordre : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, en particulier elle comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :2, ladite zone de détection comprenant optionnellement une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :1 ; - une partie absorbante. En particulier, ladite bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis dans un échantillon, comprend dans l’ordre au moins : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :2, en particulier la zone de détection comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et la protéine de séquence SEQ ID NO :2, - une partie absorbante. La partie de contact (sample pad) comprend une zone de contact destinée à être mise en contact avec l’échantillon. Sa fonction est de répartir uniformément l'échantillon pour que la migration de l’échantillon par capillarité vers les parties suivantes soit lisse, continue et homogène. La partie de contact et la zone de contact sont une matrice capillaire. Par exemple, la partie de contact et la zone de contact sont en cellulose ou en fibres de verre. La partie de détection (detection pad) comprend une zone de détection où la bactérie d’intérêt S. uberis , si elle est présente dans l’échantillon analysé, est captée sur la bandelette grâce à une protéine RBP spécifique qui y est immobilisée. La zone de détection est également appelée ligne de détection ou ligne de test. Le rôle de la partie de détection est donc de fournir un bon support et une bonne liaison pour l’immobilisation des protéines spécifiques, tout en limitant les adsorptions non spécifiques. Par exemple, la partie de détection et la zone de détection sont une membrane de nitrocellulose. La partie absorbante (absorbent pad) a un rôle d’absorption. Elle contribue ainsi à maintenir le débit du flux au travers de la bandelette et permet de récupérer les excédents d’échantillon et de réactifs, évitant ainsi le reflux d’échantillon. Par exemple, la partie absorbante est en coton, en coton mélangé avec des fibres de verre, en cellulose ou en nitrocellulose. Au sens de la présente demande « dans l’ordre » signifie l’ordre dans lequel les différentes parties qui composent la bandelette vont être traversées par le flux comprenant l’échantillon, mais ce terme ne signifie pas que ces parties sont forcément contiguës. Dans un mode de réalisation particulier, l’une des extrémités de la partie de contact est superposée avec l’une des extrémités de la partie en aval de celle-ci pour former une première zone de superposition, l’une des extrémités de la partie de détection est superposée avec l’une des extrémités de la partie en amont de celle-ci pour former une deuxième zone de superposition et l’autre extrémité de la partie de détection est superposée avec l’une des extrémités de la partie en aval de celle-ci pour former une troisième zone de superposition, et l’une des extrémités de la partie absorbante est superposée avec l’une des extrémités de la partie en aval de celle-ci pour former une quatrième zone de superposition. En particulier, la première, la deuxième et la troisième zone de superposition sont distinctes les unes des autres. En particulier, la zone de contact est distincte de la première zone de superposition. En particulier, la zone de détection est distincte de la deuxième et de la troisième zone de superposition. Dans un mode de réalisation particulier, l’une des extrémités de la partie de détection est superposée avec l’une des extrémités de la partie de contact et l’autre extrémité de la partie de détection est superposée avec l’une des extrémités de la partie absorbante. Dans un mode de réalisation plus particulier, l’une des extrémités de la partie de détection est superposée avec l’une des extrémités de la partie de contact pour former une première zone de superposition, et l’autre extrémité de la partie de détection est superposée avec l’une des extrémités de la partie absorbante pour former une deuxième zone de superposition. En particulier, la première, la deuxième et la troisième zone de superposition sont séparées les unes des autres. En particulier, la zone de contact est distincte de la première zone de superposition. En particulier, la zone de détection est distincte de la première et de la deuxième zone de superposition. Dans un mode de réalisation particulier, la zone de détection est une ligne transversale à la bandelette, formant ainsi une ligne de détection ou ligne de test. Optionnellement, la bandelette comprend un système de contrôle de la migration de l’échantillon de la partie de contact jusqu’à la partie de détection. Ainsi, optionnellement, la partie de détection comprend une zone de contrôle, de préférence en aval de la zone de détection. Cette zone de contrôle est distincte de la zone de détection. En particulier, elle est également distincte des zones de superpositions entre les parties de la bandelette. En particulier, la zone de contrôle est une ligne transversale à la bandelette, formant ainsi une ligne de contrôle ou ligne témoin. La zone de contrôle comprend un ligand spécifique d’un analyte autre que la bactérie d’intérêt S. uberis . L’analyte est conjugué à un marqueur. Optionnellement, l’analyte conjugué à un marqueur est déposé sur une partie de la bandelette en amont de la partie de détection et/ou est ajouté préalablement à l’échantillon. Par exemple, l’analyte marqué est un anticorps primaire conjugué à un marqueur et le ligand sur la zone de contrôle est un anticorps secondaire dirigé contre l’anticorps primaire conjugué à un marqueur. Lorsque la bandelette comprend trois parties, à savoir une partie de contact, une partie de détection et une partie absorbante, la détection peut se faire par exemple avec croissance bactérienne sur la partie de détection, en particulier au niveau de la zone de détection (ligne de test). Ce mode de détection avec croissance bactérienne englobe deux concepts : - après migration, ajout de gélose sur la zone de détection, et - avant migration, ajout de l’échantillon dans un milieu nutritif. En particulier, ladite gélose et ledit milieu nutritif comprennent un élément chromogène. Le concept de la méthode de détection par LFA avec croissance bactérienne et, après migration, ajout de gélose sur la zone de détection est décrit à l’Exemple 3 et illustré en FIG. 15 . La bandelette LFA utilisée dans ce mode de réalisation est une bandelette telle que décrite dans la présente demande qui comprend une partie de contact, une partie de détection et une partie absorbante. Elle ne comprend pas de partie de marquage (conjugate pad). L’échantillon à tester migre directement à travers de la partie de détection qui comprend une zone de détection (ligne de test) où est immobilisée par adsorption une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 3. En particulier, la zone de détection comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :2 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :3. Ainsi, dans ce mode de réalisation, ladite bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis dans un échantillon, comprend dans l’ordre au moins : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :2, et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :3, en particulier, la zone de détection comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :2, et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :3, - une partie absorbante. En particulier, ladite bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis dans un échantillon, comprend dans l’ordre au moins : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, en particulier elle comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :2, ladite zone de détection comprenant optionnellement une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :1 ; - une partie absorbante. En particulier, ladite bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis dans un échantillon, comprend dans l’ordre au moins : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :2, en particulier la zone de détection comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et la protéine de séquence SEQ ID NO :2, - une partie absorbante. Le procédé de détection de S. uberis par LFA avec croissance bactérienne comprend les étapes suivantes : 1) Mise en contact de la bandelette LFA telle que décrite ci-dessus avec l’échantillon à tester ; 2) Migration entre 5 et 45 min, en particulier entre 15 et 35 min, plus particulièrement entre 20 et 30 min, de préférence 30 min ; 3) Retrait de la bandelette ; 4) Découpage de la zone de détection (ligne de test) ; 5) Dépôt de la ligne de test découpée sur une gélose, ou fixation de la zone de détection découpée dans une cassette qui est ensuite recouverte de gélose ; 6) Incubation à 37°C pendant 15 h à 48h, en particulier entre 18h et 24h ; 7) Apparition de colonies le long de la ligne de test en cas de présence de S. uberis dans l’échantillon. En particulier, la gélose comprend un élément chromogène. Le procédé de détection de S. uberis par LFA avec croissance bactérienne comprend alors les étapes suivantes : 1) Mise en contact d’une bandelette LFA telle que décrite ci-dessus avec l’échantillon à tester ; 2) Migration entre 5 et 45 min, en particulier entre 15 et 35 min, plus particulièrement entre 20 et 30 min, de préférence 30 min ; 3) Retrait de la bandelette ; 4) Découpage de la zone de détection (ligne de test) ; 5) Dépôt de la ligne de test découpée sur une gélose comprenant un élément chromogène, ou fixation de la zone de détection découpée dans une cassette qui est ensuite recouverte de gélose comprenant un élément chromogène ; 6) Incubation à 37°C pendant 15 h à 48h, en particulier entre 18h et 24h ; 7) Apparition d’une coloration le long de la ligne de test en cas de présence de S. uberis dans l’échantillon. Aux étapes 1), la bandelette est plongée dans l’échantillon de manière à ce que la zone de contact de la partie de contact soit immergée dans l’échantillon. Optionnellement, l’échantillon peut être dilué dans une solution tampon. Cela permet de faciliter la migration. En particulier, la gélose mentionnée aux étapes 5) est une gélose comprenant du BHI 1X (Brain heart infusion) et de l’agar entre 0,4% et 2% (poids/volume). Si la gélose comprend un élément chromogène, l’élément chromogène est un élément que S. uberis est capable d’hydrolyser et dont le produit issu de l’hydrolyse est coloré, c’est-à-dire détectable dans le visible, c’est-à-dire entre 380 nm et 780 nm. Lorsque l’élément chromogène est le tellurite de potassium, l’apparition d’une coloration noire le long de la ligne de test traduit la présence de S. uberis dans l’échantillon testé. En effet, S. uberis est capable d’hydrolyser le tellurite de potassium en tellure qui est un composé de couleur noire. A l’inverse, l’absence de coloration noire traduit l’absence de S. uberis dans l’échantillon. En particulier, la concentration en tellurite de potassium dans la gélose est comprise entre 1,5 µM et 150 µM, en particulier entre 50 et 100 µM, en particulier elle est de 75 µM. La présente invention porte sur un le kit de détection de S. uberis par LFA avec croissance bactérienne comprenant : 1) Une bandelette de chromatographie à flux latéral telle que précédemment décrite pour détecter S. uberis dans un échantillon, 2) Une fiole de gélose comprenant optionnellement un élément chromogène tel que le tellurite de potassium ; 3) Optionnellement une cassette ; 4) Optionnellement un contenant destiné à recevoir l’échantillon. En particulier, le kit de détection de S. uberis par LFA avec croissance bactérienne comprend : : 1) Une bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis dans un échantillon, comprend dans l’ordre au moins : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :2, et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :3, en particulier la zone de détection comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :2, et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :3, - une partie absorbante ; 2) Une fiole de gélose comprenant optionnellement un élément chromogène tel que le tellurite de potassium ; 3) Optionnellement une cassette ; 4) Optionnellement un contenant destiné à recevoir l’échantillon. En particulier, le kit de détection de S. uberis par LFA avec croissance bactérienne comprend : 1) Une bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis dans un échantillon, comprend dans l’ordre au moins : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, en particulier elle comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :2, ladite zone de détection comprenant optionnellement une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :1 ; - une partie absorbante. 2) Une fiole de gélose comprenant optionnellement un élément chromogène tel que le tellurite de potassium ; 3) Optionnellement une cassette ; 4) Optionnellement un contenant destiné à recevoir l’échantillon. En particulier, le kit de détection de S. uberis par LFA avec croissance bactérienne comprend : 1) Une bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis dans un échantillon, comprend dans l’ordre au moins : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :2, en particulier la zone de détection comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et la protéine de séquence SEQ ID NO :2, - une partie absorbante ; 2) Une fiole de gélose comprenant optionnellement un élément chromogène tel que le tellurite de potassium ; 3) Optionnellement un contenant destiné à recevoir l’échantillon ; 4) Optionnellement une cassette. Le concept de la méthode de détection par LFA avec croissance bactérienne et, avant migration, ajout de l’échantillon dans un milieu nutritif est décrit à l’Exemple 8 et illustré à la FIG. 16 . La bandelette LFA utilisée dans ce mode de réalisation est une bandelette telle que décrite dans la présente demande qui comprend une partie de contact, une partie de détection et une partie absorbante. Elle ne comprend pas de partie de marquage (conjugate pad). L’échantillon à tester migre directement à travers de la partie de détection qui comprend une zone de détection (ligne de test) où est immobilisée par adsorption une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 3. En particulier, la zone de détection comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :2 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :3. Ainsi, dans ce mode de réalisation, ladite bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis dans un échantillon, comprend dans l’ordre au moins : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :2, et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :3, en particulier la zone de détection comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :2, et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :3, - une partie absorbante. En particulier, ladite bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis dans un échantillon, comprend dans l’ordre au moins : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, en particulier elle comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :2, ladite zone de détection comprenant optionnellement une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :1 ; - une partie absorbante. En particulier, ladite bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis dans un échantillon, comprend dans l’ordre au moins : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :2, en particulier la zone de détection comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et la protéine de séquence SEQ ID NO :2, - une partie absorbante. Le procédé de détection de S. uberis par LFA avec croissance bactérienne comprend les étapes suivantes : 1) Addition d’un échantillon à tester dans un milieu nutritif ; 2) Mise en contact d’une bandelette LFA telle que décrite ci-dessus avec le mélange obtenu à l’étape 1) ; 3) Migration entre 5 et 45 min, en particulier entre 15 et 35 min, plus particulièrement entre 20 et 30 min, de préférence 30 min ; 4) Incubation de la bandelette à 37°C pendant 15h à 24h, de préférence entre 18h et 20h ; 5) Apparition de colonies le long de la ligne de test en cas de présence de S. uberis dans l’échantillon. En particulier, le milieu nutritif comprend un élément chromogène. Le procédé de détection de S. uberis par LFA avec croissance bactérienne comprend alors les étapes suivantes : 1) Addition d’un échantillon à tester dans un milieu nutritif comprenant un élément chromogène ; 2) Mise en contact d’une bandelette LFA telle que décrite ci-dessus avec le mélange obtenu à l’étape 1) ; 3) Migration entre 5 et 45 min, en particulier entre 15 et 35 min, plus particulièrement entre 20 et 30 min, de préférence 30 min ; 4) Incubation de la bandelette à 37°C pendant 15h à 24h, de préférence entre 18h et 20h ; 5) Apparition d’une coloration le long de la ligne de test en cas de présence de S. uberis dans l’échantillon. Quand la migration se termine, c’est-à-dire que tous les éléments de la bandelette, dont la partie absorbante, sont imbibés de solution, il reste encore assez de liquide au niveau la partie de contact, ce qui permet de prévenir une déshydratation de la bandelette. Aux étapes 1), la bandelette est plongée dans l’échantillon de manière à ce que la zone de contact de la partie de contact soit immergée dans l’échantillon. Typiquement, le ratio échantillon/milieu nutritif est de 1:10. Le milieu nutritif peut être un milieu BHI 1X (Brain heart infusion). Optionnellement, il peut comprendre 1% (poids/volume) de Tween 20. Si le milieu nutritif comprend un élément chromogène, l’élément chromogène est un élément que S. uberis est capable d’hydrolyser et dont le produit issu de l’hydrolyse est coloré, c’est-à-dire détectable dans le visible, c’est-à-dire entre 380 nm et 780 nm. Lorsque l’élément chromogène est le tellurite de potassium, l’apparition d’une coloration noire le long de la ligne de test traduit la présence de S. uberis dans l’échantillon testé. En effet, S. uberis est capable d’hydrolyser le tellurite de potassium en tellure qui est un composé de couleur noire. A l’inverse, l’absence de coloration noire traduit l’absence de S. uberis dans l’échantillon. En particulier, la concentration en tellurite de potassium est comprise entre 5 mg/mL et 50 mg/mL, plus particulièrement entre 15 mg/L et 25 mg/L, en particulier elle est de 20 mg/L. En particulier, les étapes 2), 3) et 4) sont réalisées dans un tube capable de fermer hermétiquement. En effet, l’échantillon à tester est ajouté au milieu nutritif comprenant en particulier un élément chromogène. Le mélange est homogénéisé et versé dans un tube capable de fermer hermétiquement. La bandelette est alors plongée dans le mélange comme décrit à l’étape 2), de manière à ce que la zone de contact de la partie de contact soit immergée dans le mélange. Le tube est alors fermé puis maintenu à la verticale avec la bandelette à l’intérieur pour la migration comme indiquée à l’étape 3), puis mis à incubation tel que décrit à l’étape 4). Le tube capable de fermer hermétiquement a des dimensions appropriées pour contenir ladite bandelette LFA en position verticale tout en garantissant une fermeture hermétique. Cela permet d’éviter le dessèchement de la bandelette pendant l’incubation. En particulier, il s’agit d’un tube transparent ce qui permet de lire le résultat de la détection au travers, sans besoin d’ouvrir ledit tube. La présente invention porte ainsi également sur un kit de détection de S. uberis par LFA avec croissance bactérienne comprenant : 1) Une bandelette de chromatographie à flux latéral telle que précédemment décrite pour détecter S. uberis dans un échantillon, 2) Un tube capable de fermer hermétiquement ; 3) Une fiole comprenant le milieu nutritif avec un élément chromogène, en particulier le tellurite de potassium ; 4) Optionnellement, un contenant destiné à recevoir l’échantillon. En particulier, le kit de détection de S. uberis comprend : 1) Une bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis dans un échantillon, comprend dans l’ordre au moins : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :2, et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :3, en particulier la zone de détection comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :2, et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :3, - une partie absorbante ; 2) Un tube capable de fermer hermétiquement ; 3) Une fiole comprenant le milieu nutritif avec un élément chromogène, en particulier le tellurite de potassium ; 4) Optionnellement, un contenant destiné à recevoir l’échantillon. En particulier, le kit de détection de S. uberis comprend : 1) Une bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis dans un échantillon, comprend dans l’ordre au moins : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, en particulier elle comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :2, ladite zone de détection comprenant optionnellement une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :1 ; - une partie absorbante ; 2) Un tube capable de fermer hermétiquement ; 3) Une fiole comprenant le milieu nutritif avec un élément chromogène, en particulier le tellurite de potassium ; 4) Optionnellement un contenant destiné à recevoir l’échantillon. En particulier, le kit de détection de S. uberis par LFA avec croissance bactérienne comprend : 1) Une bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis dans un échantillon, comprend dans l’ordre au moins : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :2, en particulier la zone de détection comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et la protéine de séquence SEQ ID NO :2, - une partie absorbante ; 2) Un tube capable de fermer hermétiquement ; 3) Une fiole comprenant le milieu nutritif avec un élément chromogène, en particulier le tellurite de potassium ; 4) Optionnellement un contenant destiné à recevoir l’échantillon. Dans un mode de réalisation particulier, ladite bandelette de chromatographie à flux latéral permet de détecter S. uberis et une ou plusieurs autres bactéries d’intérêt dans un échantillon. La partie de détection comprend alors une ou plusieurs zones de détection en plus sur lesquels sont immobilisés les ligands appropriés pour détecter cette ou ces autres bactéries d’intérêt. Ce type de bandelette est appelé « Duplex LFA ». Dans un mode de réalisation particulier, ladite bandelette de chromatographie à flux latéral permet de détecter S. uberis et S. aureus dans un échantillon. Dans un mode de réalisation particulier, ladite bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis et S. aureus dans un échantillon, est une bandelette telle que décrite précédemment, comprenant 3 parties, à savoir une partie de contact, une partie de détection et une partie absorbante, et qui comprend une zone de détection supplémentaire dans la partie de détection. Sur cette zone de détection supplémentaire, ou ligne de test, est immobilisé un ligand spécifique de S. aureus . Ce ligand spécifique de S. aureus peut être au moins un anticorps dirigé contre la S. aureus , au moins un aptamère spécifique de S. aureus , au moins un bactériophage spécifique de S. aureus , au moins une protéine d’au moins un bactériophage spécifique de S. aureus , au moins un bactériophage spécifique de S. aureus couplé à un anticorps dirigé contre S. aureus , au moins une protéine d’un bactériophage spécifique de S. aureus couplée à un anticorps dirigé contre S. aureus . En particulier, ladite au moins une protéine d’au moins un bactériophage spécifique de S. aureus est une protéine RBP. Plus particulièrement, il peut d’agir d’une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 4 et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :5. Typiquement, il peut s’agir de la protéine de séquence SEQ ID NO :4 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :5. Ainsi, par exemple, ladite bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis et S. aureus dans un échantillon comprend dans l’ordre au moins : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :2, et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :3, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :2, et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :3, et comprenant une zone de détection de S. aureus qui comprend un anticorps dirigé contre S. aureus ; - une partie absorbante. En particulier, ladite bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis et S. aureus dans un échantillon comprend dans l’ordre au moins : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :2, ladite zone de détection de S. uberis comprenant optionnellement une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :1, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :1, et comprenant une zone de détection de S. aureus qui comprend un anticorps dirigé contre S. aureus ; - une partie absorbante. En particulier, ladite bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis et S. aureus dans un échantillon comprend dans l’ordre au moins : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2 et une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :1, en particulier elle comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :2 et la protéine de séquence SEQ ID NO :1, et comprenant une zone de détection de S. aureus qui comprend un anticorps dirigé contre S. aureus ; - une partie absorbante. Par exemple, ladite bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis et S. aureus dans un échantillon comprend dans l’ordre au moins : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :2, et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :3, en particulier la zone de détection de S. uberis comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :2, et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :3, et comprenant une zone de détection de S. aureus qui comprend un ligand spécifique de S. aureus , en particulier une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 4 et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :5, en particulier la zone de détection de S. aureus comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :4 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :5 ; - une partie absorbante. En particulier, ladite bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis et S. aureus dans un échantillon comprend dans l’ordre au moins : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :2, ladite zone de détection de S. uberis comprenant optionnellement une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :1, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :1, et comprenant une zone de détection de S. aureus qui comprend un ligand spécifique de S. aureus , en particulier une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 4 et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :5, en particulier la zone de détection de S. aureus comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :4 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :5 ; - une partie absorbante. En particulier, ladite bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis et S. aureus dans un échantillon comprend dans l’ordre au moins : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2 et une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :1, en particulier elle comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :2 et la protéine de séquence SEQ ID NO :1, et comprenant une zone de détection de S. aureus qui comprend un ligand spécifique de S. aureus, en particulier une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 4 et une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :5, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :4 et la protéine de séquence SEQ ID NO :5 ; - une partie absorbante. Dans la partie de détection, la zone de détection de S. uberis et la zone de détection de S. aureus sont distinctes l’une de l’autre, c’est-à-dire qu’elles ne se chevauchent pas. Dans un mode de réalisation particulier, la détection de S. uberis et d’une autre bactérie d’intérêt est réalisée par le concept de la méthode de détection par LFA avec croissance bactérienne avec une bandelette LFA permettant également de détecter une ou plusieurs autres bactéries d’intérêt, et après migration, ajout de gélose sur la zone de détection. La bandelette LFA utilisée dans ce mode de réalisation est une bandelette LFA dite « Duplex » telle que décrite précédemment, qui comprend une partie de contact, une partie de détection et une partie absorbante. Elle ne comprend pas de partie de marquage (conjugate pad). En particulier, il s’agit d’une bandelette LFA pour détecter S. uberis et S. aureus dans un échantillon telle que décrite précédemment. Le procédé de détection de S. uberis et S. aureus comprend alors les étapes suivantes : 1) Mise en contact d’une bandelette LFA telle que décrite dans la présente demande avec l’échantillon à tester ; 2) Migration entre 5 et 45 min, en particulier entre 15 et 35 min, plus particulièrement entre 20 et 30 min, de préférence 30 min ; 3) Retrait de la bandelette ; 4) Découpage de la zone de détection (ligne de test) ; 5) Dépôt de la ligne de test découpée sur une gélose comprenant optionnellement un élément chromogène, ou fixation de la zone de détection découpée dans une cassette qui est ensuite recouverte de gélose comprenant optionnellement un élément chromogène ; 6) Incubation à 37°C pendant 15 h à 48h, en particulier entre 18h et 24h ; 7) Apparition de colonies ou apparition d’une coloration, dans le cas où la gélose comprend un élément chromogène, le long de la ligne de test de S. uberis en cas de présence de S. uberis dans l’échantillon et/ou apparition de colonies ou apparition d’une coloration, dans le cas où la gélose comprend un élément chromogène, le long de la ligne de test de S. aureus en cas de présence de S. aureus dans l’échantillon. En particulier, il s’agit d’une gélose comprenant du BHI 1X (Brain heart infusion) et de l’agar entre 0,4% et 2% (poids/volume). Si la gélose comprend un élément chromogène, l’élément chromogène est un élément que S. uberis et S. aureus sont capables d’hydrolyser et dont le produit issu de l’hydrolyse est coloré, c’est-à-dire détectable dans le visible, c’est-à-dire entre 380 nm et 780 nm. Lorsque l’élément chromogène est le tellurite de potassium, l’apparition d’une coloration noire le long de la ligne de test traduit la présence de S. uberis et/ou S. aureus dans l’échantillon testé. En effet, S. uberis et S. aureus sont capables d’hydrolyser le tellurite de potassium en tellure qui est un composé de couleur noire. A l’inverse, l’absence de coloration noire traduit l’absence de S. uberis et/ou S. aureus dans l’échantillon. En particulier, la concentration en tellurite de potassium dans la gélose est comprise entre 1,5 µM et 150 µM, en particulier entre 50 et 100 µM, en particulier elle est de 75 µM. La présente invention porte ainsi également sur un kit de détection de S. uberis et S. aureus comprenant : 1) Une bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis et S. aureus telle que décrite dans la présente demande ; 2) Une fiole de gélose comprenant optionnellement un élément chromogène tel que le tellurite de potassium ; 3) Optionnellement une cassette ; 4) Optionnellement un contenant destiné à recevoir l’échantillon. Dans un mode de réalisation particulier, la détection de S. uberis et d’une autre bactérie d’intérêt est réalisée par le concept de la méthode de détection par LFA avec croissance bactérienne avec une bandelette LFA permettant également de détecter une ou plusieurs autres bactéries d’intérêt et, avant migration, ajout de l’échantillon dans un milieu nutritif. La bandelette LFA utilisée dans ce mode de réalisation est une bandelette LFA dite « Duplex » telle que décrite précédemment, qui comprend une partie de contact, une partie de détection et une partie absorbante. Elle ne comprend pas de partie de marquage (conjugate pad). En particulier, il s’agit d’une bandelette LFA pour détecter S. uberis et S. aureus dans un échantillon telle que décrite précédemment. Le procédé de détection de S. uberis et S. aureus comprend alors les étapes suivantes : 1) Addition d’un échantillon à tester dans un milieu nutritif comprenant optionnellement un élément chromogène ; 2) Mise en contact d’une bandelette LFA telle que décrite dans la présente demande avec le mélange obtenu à l’étape 1) ; 3) Migration entre 5 et 45 min, en particulier entre 15 et 35 min, plus particulièrement entre 20 et 30 min, de préférence 30 min ; 4) Incubation à 37°C pendant 15 h à 24h, en particulier entre 18h et 20h ; 5) Apparition de colonies ou apparition d’une coloration, dans le cas où la gélose comprend un élément chromogène, le long de la ligne de test de S. uberis en cas de présence de S. uberis dans l’échantillon et/ou apparition de colonies ou apparition d’une coloration, dans le cas où la gélose comprend un élément chromogène, le long de la ligne de test de S. aureus en cas de présence de S. aureus dans l’échantillon. Typiquement, le ratio échantillon/milieu nutritif est de 1:10. Le milieu nutritif peut être un milieu BHI 1X (Brain heart infusion). Optionnellement, il peut comprendre 1% (poids/volume) de Tween 20. Si le milieu nutritif comprend un élément chromogène, l’élément chromogène est un élément que S. uberis et S. aureus sont capables d’hydrolyser et dont le produit issu de l’hydrolyse est coloré, c’est-à-dire détectable dans le visible, c’est-à-dire entre 380 nm et 780 nm. Lorsque l’élément chromogène est le tellurite de potassium, l’apparition d’une coloration noire le long de la ligne de test traduit la présence de S. uberis et/ou S. aureus dans l’échantillon testé. En effet, S. uberis et S. aureus sont capables d’hydrolyser le tellurite de potassium en tellure qui est un composé de couleur noire. A l’inverse, l’absence de coloration noire traduit l’absence de S. uberis et/ou S. aureus dans l’échantillon. En particulier, la concentration en tellurite de potassium dans le milieu nutritif est comprise entre 5 mg/mL et 50 mg/mL, plus particulièrement entre 15 mg/L et 25 mg/L, en particulier elle est de 20 mg/L. En particulier, les étapes 2), 3) et 4) sont réalisées dans un tube capable de fermer hermétiquement. La présente invention porte ainsi également sur un kit de détection de S. uberis et S. aureus comprenant : 1) Une bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis et S. aureus telle que décrite dans la présente demande ; 2) Un tube capable de fermer hermétiquement ; 3) Une fiole comprenant le milieu nutritif comprenant optionnellement un élément chromogène, en particulier le tellurite de potassium ; 4) Optionnellement un contenant destiné à recevoir l’échantillon. Dans un mode de réalisation, la partie comprenant la protéine est une partie de marquage et/ou une partie de détection. Ainsi, dans un mode de réalisation particulier, ladite bandelette comprend en plus, entre la partie de contact et la partie de détection, une partie de marquage qui comprend une zone de marquage. La partie de marquage (conjugate pad) comprend une zone de marquage où les bactéries sont marquées avec un marqueur lorsque le flux d’échantillon à analyser la traverse. Leur rôle est de maintenir le marqueur jusqu’à utilisation de la bandelette et de libérer le marqueur lorsqu’il y a reconnaissance entre le marqueur et une bactérie, au passage du flux d’échantillon. Par exemple la partie de marquage et la zone de marquage sont en fibres de verre, cellulose ou polyesters. Ainsi, dans un mode de réalisation particulier, la présente invention porte sur une bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis dans un échantillon, comprenant dans l’ordre au moins : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une partie de marquage comprenant une zone de marquage qui comprend un marqueur ; - une partie de détection comprenant une zone de détection de la bactérie d’intérêt qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :2, et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :3, en particulier la zone de détection comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :2, et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :3, - une partie absorbante. En particulier, la présente invention porte sur une bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis dans un échantillon, comprenant dans l’ordre au moins : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une partie de marquage comprenant une zone de marquage qui comprend un marqueur ; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, en particulier elle comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :2, ladite zone de détection comprenant optionnellement une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :1 ; - une partie absorbante. En particulier, la présente invention porte sur une bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis dans un échantillon, comprenant dans l’ordre au moins : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une partie de marquage comprenant une zone de marquage qui comprend un marqueur ; - une partie de détection comprenant une zone de détection de la bactérie d’intérêt qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :2, en particulier la zone de détection comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et la protéine de séquence SEQ ID NO :2 ; - une partie absorbante. A sens de la présente demande, le marqueur peut être tout marqueur apte à marquer une bactérie. Les marqueurs de bactéries sont bien connus de l’Homme du métier. Le terme « marqueur » englobe les marqueurs non conjugués et les marqueurs conjugués. Au sens de la présente demande, un marqueur non conjugué est un marqueur libre, c’est-à-dire qu’il n’est pas lié à un ligand pour marquer la bactérie. Il s’agit par exemple de colorants fluorescents. Les colorants fluorescents capables de marquer des bactéries sont bien connus de l’Homme du métier, tels que le DAPI (4',6-diamidino-2-phénylindole) ou le SYTO9 à titre d’exemples. Un marqueur conjugué peut être par exemple : une nanoparticule d’or (AuNP) ou or colloïdale, une bille de latex colorée, une nanoparticule de carbone ou carbone colloïdal, une particule magnétique, une boite quantique (quantum dots), un phosphore de conversion ascendante (upconverting phosphors, UCP), une molécule luminescente incluant les molécules fluorescentes (fluorophores) et les molécules phosphorescentes, un colorant, un liposome ou une enzyme telles que la peroxydase de raifort (HRP) qui catalyse la conversion de substrats chromogènes en composés colorés, ou qui produit de la lumière à partir de substrats chimioluminescents. Ces marqueurs conjugués sont connus de l’art antérieur (Sajid et al., 2015). En particulier, le marqueur est une nanoparticule d’or (AuNP). Par « nanoparticule d’or » on entend qu'il peut s’agit d’une nanosphère d’or ou d’un nanobâtonnet d’or. Plus particulièrement, il s’agit de nanosphères d’or de diamètre 40 nm. L’agrégation des nanoparticules d’or entraine l’apparition d’une couleur détectable dans le visible, qui varie en fonction de la taille des nanoparticules. En particulier, le marqueur est une bille de latex colorée. Par exemple, le diamètre des billes de latex est de 400 nm. L’agrégation des billes de latex colorée entraine l’apparition d’une couleur détectable dans le visible. Plusieurs couleurs de billes de latex sont disponibles dans le commerce. En particulier, le marqueur est l’HRP. Au sens de la présente demande, un marqueur conjugué signifie que le marqueur est lié à au moins un ligand spécifique de la bactérie d’intérêt. Par « conjugué à au moins un ligand spécifique », on entend qu’un marqueur peut être conjugué à un ligand spécifique ou à plusieurs ligands spécifiques différents. Pour lier un marqueur à un ligand, une liaison biotine/streptavidine peut par exemple être utilisée. Au sens de la présente demande, « ledit au moins un ligand spécifique de la bactérie d’intérêt » peut être au moins un anticorps dirigé contre la bactérie d’intérêt, au moins un aptamère spécifique de la bactérie d’intérêt, au moins un bactériophage spécifique de la bactérie d’intérêt, au moins une protéine d’au moins un bactériophage spécifique de la bactérie d’intérêt, au moins un bactériophage spécifique de la bactérie d’intérêt couplé à un anticorps dirigé contre la bactérie d’intérêt, au moins une protéine d’un bactériophage spécifique de la bactérie d’intérêt couplée à un anticorps dirigé contre la bactérie d’intérêt. En particulier, ladite au moins une protéine d’au moins un bactériophage spécifique de la bactérie d’intérêt est une protéine RBP. En particulier, il s’agit d’une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et/ou d’une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :2, et/ou d’une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :3. En particulier, il peut d’agir de la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et/ou de la protéine de séquence SEQ ID NO :2, et/ou de la protéine de séquence SEQ ID NO :3. Ainsi, la présente invention porte sur une bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis dans un échantillon, comprenant dans l’ordre au moins : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une partie de marquage comprenant une zone de marquage qui comprend un marqueur conjugué à au moins un ligand spécifique de S. uberis , en particulier une nanoparticule d’or ou une bille de latex colorée conjuguée à au moins un ligand spécifique de S. uberis ; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :2, et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :3, en particulier la zone de détection comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :2, et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :3, - une partie absorbante. En particulier, ladite bandelette pour détecter S. uberis dans un échantillon comprend dans l’ordre au moins : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une partie de marquage comprenant une zone de marquage qui comprend un marqueur ; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, en particulier elle comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :2, ladite zone de détection comprenant optionnellement une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :1 ; - une partie absorbante ; ledit marqueur étant conjugué à un ligand spécifique de S. uberis choisi parmi au moins un anticorps dirigé contre S. uberis , au moins un aptamère spécifique de S. uberis , au moins un bactériophage spécifique de S. uberis , au moins une protéine d’au moins un bactériophage spécifique S. uberis , au moins un bactériophage spécifique de S. uberis couplé à un anticorps dirigé contre S. uberis , au moins une protéine d’un bactériophage spécifique de S. uberis couplée à un anticorps dirigé contre S. uberis , en particulier ladite au moins une protéine d’au moins un bactériophage spécifique de S. uberis est une protéine RBP, plus particulièrement, une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, en particulier il s’agit de la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :2, en particulier, ledit marqueur est une nanoparticule d’or ou une bille de latex colorée. En particulier, la présente invention porte sur une bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis dans un échantillon, comprenant dans l’ordre au moins : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une partie de marquage comprenant une zone de marquage qui comprend un anticorps dirigé contre S. uberis conjugué à un marqueur , en particulier un anticorps dirigé contre S. uberis conjugué à une nanoparticule d’or ou une bille de latex colorée ; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :2, et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :3, en particulier la zone de détection comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :2, et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :3 ; - une partie absorbante. En particulier, la présente invention porte sur une bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis dans un échantillon, comprenant dans l’ordre au moins : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une partie de marquage comprenant une zone de marquage qui comprend un anticorps dirigé contre S. uberis conjugué à un marqueur , en particulier un anticorps dirigé contre S. uberis conjugué à une nanoparticule d’or ou une bille de latex colorée ; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, en particulier elle comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :2, ladite zone de détection comprenant optionnellement une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :1 ; - une partie absorbante. En particulier, la présente invention porte sur une bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis dans un échantillon, comprenant dans l’ordre au moins : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une partie de marquage comprenant une zone de marquage qui comprend un anticorps dirigé contre S. uberis conjugué à un marqueur , en particulier un anticorps dirigé contre S. uberis conjugué à une nanoparticule d’or ou une bille de latex colorée ; - une partie de détection comprenant une zone de détection de la bactérie d’intérêt qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2 et une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :1, en particulier la zone de détection comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :2 et la protéine de séquence SEQ ID NO :1 ; - une partie absorbante. En particulier, la présente invention porte sur une bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis dans un échantillon, comprenant dans l’ordre au moins : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une partie de marquage comprenant une zone de marquage qui comprend un marqueur, en particulier une nanoparticule d’or ou une bille de latex colorée, conjugué à une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :2, et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :3, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :2, et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :3; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :2, et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :3, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :2, et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :3, - une partie absorbante. En particulier, la présente invention porte sur une bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis dans un échantillon, comprenant dans l’ordre au moins : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une partie de marquage comprenant une zone de marquage qui comprend un marqueur, en particulier une nanoparticule d’or ou une bille de latex colorée, conjugué à une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, en particulier elle comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :2, ladite zone de marquage comprenant optionnellement une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :1 ; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, en particulier elle comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :2, ladite zone de détection comprenant optionnellement une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :1 ; - une partie absorbante. En particulier, la présente invention porte sur une bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis dans un échantillon, comprenant dans l’ordre au moins : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une partie de marquage comprenant une zone de marquage qui comprend un marqueur, en particulier une nanoparticule d’or ou une bille de latex colorée, conjugué à une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, en particulier conjugué à la protéine de séquence SEQ ID NO :2, et un marqueur, en particulier une nanoparticule d’or ou une bille de latex colorée, conjugué à une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1, en particulier conjugué à la protéine de séquence SEQ ID NO :1; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2 et une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :1, en particulier la zone de détection comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :2 et la protéine de séquence SEQ ID NO :1, - une partie absorbante. Dans un autre mode de réalisation particulier, la présente invention porte sur une bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis dans un échantillon, comprenant dans l’ordre au moins : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une partie de marquage comprenant une zone de marquage qui comprend un marqueur conjugué à une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :2, et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :3, en particulier la zone de marquage comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :2, et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :3; - une partie de détection comprenant une zone de détection de la bactérie d’intérêt qui comprend au moins un ligand spécifique de S. uberis ; - une partie absorbante. En particulier, le marqueur est une nanoparticule d’or ou une bille de latex colorée. Ledit au moins un ligand spécifique de S. uberis dans la zone de détection peut être au moins un anticorps dirigé contre la bactérie d’intérêt, au moins un aptamère spécifique de la bactérie d’intérêt, au moins un bactériophage spécifique de la bactérie d’intérêt, au moins une protéine d’au moins un bactériophage spécifique de la bactérie d’intérêt, au moins un bactériophage spécifique de la bactérie d’intérêt couplé à un anticorps dirigé contre la bactérie d’intérêt, au moins une protéine d’un bactériophage spécifique de la bactérie d’intérêt couplée à un anticorps dirigé contre la bactérie d’intérêt. En particulier, ladite au moins une protéine d’au moins un bactériophage spécifique de la bactérie d’intérêt est une protéine RBP. Plus particulièrement, il peut d’agir d’une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :2, et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :3. En particulier, il peut s’agir de la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :2, et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :3. La présente demande porte également sur un kit de détection de S. uberis comprenant : 1) Une bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis comprenant une partie de contact, une partie de marquage, une partie de détection et une partie absorbante telle que décrite ci-dessus ; 2) Un contenant destiné à recevoir l’échantillon. Dans un mode de réalisation particulier, la présente demande porte sur un kit de détection de S. uberis comprenant : - une bandelette telle que décrite dans la présente demande ; - un contenant destiné à recevoir l’échantillon ; - un contenant comprenant un marqueur. Dans ce mode de réalisation particulier, ladite bandelette comprend ainsi soit une partie de contact, une partie de détection et une partie absorbante, soit une partie de contact, une partie de marquage, une partie de détection et une partie absorbante, telle que décrit dans la présente demande. Le marqueur peut être un marqueur non conjugué ou un marqueur conjugué tels que définis précédemment. Le marqueur conjugué peut être conjugué à au moins un ligand spécifique comme défini précédemment. Dans un mode de réalisation particulier, le marqueur peut être compris dans le contenant destiné à recevoir l’échantillon. Ce mode de réalisation du kit peut comprendre une bandelette de chromatographie à flux latéral avec ou sans partie de marquage. Ainsi ce mode de réalisation du kit de détection s’applique à toutes les bandelettes décrites dans la présente demande. Lorsque la bandelette de chromatographie à flux latéral comprend une partie de marquage, le kit comprend optionnellement un contenant comprenant un marqueur. Ainsi, lorsque la bandelette de chromatographie à flux latéral comprend une partie de marquage, le kit de détection de S. uberis , dans un échantillon comprend : - ladite bandelette ; - un contenant destiné à recevoir l’échantillon. Dans un autre mode de réalisation particulier, le kit de détection de S. uberis , dans un échantillon comprend : - une bandelette comprenant au moins : une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; une partie de détection comprenant une zone de détection de la bactérie d’intérêt qui comprend au moins un anticorps dirigé contre la bactérie d’intérêt et/ou au moins un aptamère spécifique de S. uberis , une partie absorbante ; - un contenant destiné à recevoir l’échantillon ; - un contenant comprenant un marqueur conjugué à une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et/ou conjugué à une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :2, et/ou conjugué à une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :3, en particulier conjugué à la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et/ou conjugué à la protéine de séquence SEQ ID NO :2, et/ou conjugué à la protéine de séquence SEQ ID NO :3. Selon un autre aspect, la présente invention porte sur un procédé de détection de S. uberis dans un échantillon en utilisant les bandelettes de chromatographie à flux latéral décrites précédemment. Un échantillon désigne toute solution susceptible de contenir la bactérie d’intérêt. L’échantillon peut être dilué dans une solution tampon préalablement à la mise en œuvre du procédé de détection. Dans un mode de réalisation particulier, le procédé de détection de S. uberis dans un échantillon comprend : - une étape de marquage des bactéries ou de la bactérie d’intérêt dans l’échantillon ; - une étape de mise en contact de l’échantillon avec la zone de contact d’une bandelette telle que précédemment décrite ; - une étape de détection du marqueur sur la zone de détection ; - une étape d’analyse de la présence ou de l’absence de S. uberis dans l’échantillon. Ainsi, dans un mode de réalisation, l’étape de marquage est réalisée dans l’échantillon, c’est-à-dire préalablement à la mise en contact de l’échantillon avec la zone de contact de la bandelette. Ce mode de réalisation du procédé de détection est applicable que la bandelette de chromatographie à flux latéral utilisée comprenne ou ne comprenne pas une partie de marquage. Ainsi ce mode de réalisation du procédé de détection s’applique à toutes les bandelettes décrites dans la présente demande. Lorsque la bandelette utilisée dans ce mode de détection contient une partie de marquage, un double marquage de la bactérie d’intérêt est alors réalisé, le marqueur utilisé dans l’étape de marquage dans l’échantillon et le marqueur compris dans la zone de marquage de la bandelette pouvant être identiques ou différents. L’étape de marquage est réalisée avec un marqueur non conjugué ou un marqueur conjugué tels que définis précédemment dans la demande. Le marqueur conjugué peut être conjugué à au moins un ligand spécifique comme défini précédemment. L’Homme du métier sait comment réaliser cette étape de marquage en fonction du marqueur choisi. En particulier, lorsqu’il s’agit d’un marqueur conjugué, une incubation de l’échantillon avec le marqueur conjugué peut être réalisée. L’Homme du métier sait adapter l’étape de détection en fonction du marqueur utilisé. En particulier, lorsque le marqueur est une nanoparticule d’or ou une bille de latex colorée, la détection se fait dans le visible. En particulier, lorsque le marqueur utilisé est un marqueur fluorescent, un lecteur de fluorescence est utilisé. En particulier, lorsque le marqueur utilisé est une enzyme, le substrat de la réaction qu’elle catalyse est ajouté. Plus particulièrement, quand il s’agit de la peroxydase de raifort (HRP) qui catalyse la conversion de substrats chromogènes en composés colorés, ou qui produit de la lumière à partir de substrats chimioluminescents, le substrat ajouté est par exemple l’acide 2,2'-azino-bis(3-éthylbenzothiazoline-6-sulphonique) (ABTS), le 1,2-diaminobenzène (OPD), le 3,3'-Diaminobenzidine (DAB), le 3-Amino-9-éthylcarbazole (AEC) ou encore le 3,3',5,5'-tétraméthylbenzidine (TMB) pour les réactions colorées ; l'acide homovanillique et la tyramine pour la spectroscopie de fluorescence ; le luminol pour la production de lumière. Pour lier un marqueur à un ligand, une liaison biotine/streptavidine peut par exemple être utilisée. En particulier, le marqueur utilisé est une nanoparticule d’or ou une bille de latex colorée. La présence de la bactérie d’intérêt dans l’échantillon analysé est conclue lorsque le marqueur est détecté sur la zone de détection. En particulier, lorsque le marqueur est une nanoparticule d’or, un signal coloré visible à l’œil nu apparait. En particulier, lorsque le marqueur utilisé est un marqueur fluorescent (conjugué ou non), un signal fluorescent apparait sur la zone de détection. Lorsque le marqueur utilisé est une enzyme telle que la peroxydase de raifort, un substrat tels que ceux listés ci-dessus, est ajouté et un signal coloré visible à l’œil nu, un signal fluorescent ou un signal luminescent est observé selon le substrat. L’absence de la bactérie d’intérêt dans l’échantillon est conclue lorsque le marqueur n’est pas détecté sur la zone de détection. Lorsque la bandelette de chromatographie à flux latéral utilisée pour le procédé de détection comprend une partie de marquage, l’étape de marquage des bactéries ou de la bactérie d’intérêt dans l’échantillon est optionnelle. Ainsi, lorsque la bandelette de chromatographie à flux latéral utilisée pour le procédé de détection comprend une partie de marquage, le procédé de détection de S. uberis, dans un échantillon peut comprendre : - une étape de mise en contact de l’échantillon avec la zone de contact d’une bandelette telle que précédemment décrite ; - une étape de détection du marqueur sur la zone de détection ; - une étape d’analyse de la présence ou de l’absence de S. uberis dans l’échantillon. Dans un autre mode de réalisation particulier, le procédé de détection de S. uberis dans un échantillon comprend : - une étape de marquage de la bactérie d’intérêt dans l’échantillon avec un marqueur conjugué à une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :2, et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :3, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :2, et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :3 ; - une étape de mise en contact de l’échantillon avec la zone de contact d’une bandelette comprenant au moins une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend au moins un anticorps dirigé contre S. uberis et/ou au moins un aptamère spécifique de S. uberis, une partie absorbante ; - une étape de détection du marqueur sur la zone de détection ; - une étape d’analyse de la présence ou de l’absence de S. uberis dans l’échantillon. Selon un aspect, la présente demande porte sur un kit de détection comprenant : 1) Une bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis telle que décrite précédemment comprenant une partie de contact, une partie de marquage, une partie de détection et une partie absorbante telle que décrite ci-dessus ; 2) Un contenant destiné à recevoir l’échantillon ; 3) Un contenant comprenant marqueur conjugué à une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :2, et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :3, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :2, et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :3. Dans un mode de réalisation particulier, ladite bandelette de chromatographie à flux latéral permet de détecter S. uberis et une ou plusieurs autres bactéries d’intérêt dans un échantillon. La partie de détection comprend alors une ou plusieurs zones de détection en plus et une ou plusieurs parties de marquage en plus sur lesquels sont immobilisés les ligands et marqueurs appropriés pour détecter cette ou ces autres bactéries d’intérêt. Ce type de bandelette est appelé « Duplex LFA ». Dans un mode de réalisation particulier, ladite bandelette de chromatographie à flux latéral permet de détecter S. uberis et S. aureus dans un échantillon. Dans un mode de réalisation particulier, ladite bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis et S. aureus dans un échantillon, est une bandelette telle que décrite précédemment, comprenant 4 parties, à savoir une partie de contact, une partie de marquage, une partie de détection et une partie absorbante, et qui comprend : - une zone de détection supplémentaire dans la partie de détection. Cette zone de détection supplémentaire, ou ligne de test, comprend un ligand spécifique de S. aureus ,; - une deuxième partie de marquage qui comprend une zone de marquage avec un marqueur conjugué à un ligand spécifique de S. aureus . Ledit ligand spécifique de S. aureus peut être au moins un anticorps dirigé contre la S. aureus , au moins un aptamère spécifique de S. aureus , au moins un bactériophage spécifique de S. aureus , au moins une protéine d’au moins un bactériophage spécifique de S. aureus , au moins un bactériophage spécifique de S. aureus couplé à un anticorps dirigé contre S. aureus , au moins une protéine d’un bactériophage spécifique de S. aureus couplée à un anticorps dirigé contre S. aureus . En particulier, ladite au moins une protéine d’au moins un bactériophage spécifique de S. aureus est une protéine RBP. En particulier, il peut d’agir d’une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 4 et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :5. Plus particulièrement, il peut s’agir de la protéine de séquence SEQ ID NO :4 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :5. Plusieurs types de bandelettes Duplex LFA peuvent donc être réalisées, selon que : - la zone de marquage de S. uberis comprenne un marqueur couplé à un ligand spécifique de S. uberis ou un marqueur couplé à une protéine spécifique comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec SEQ ID NO :1 et/ou SEQ ID NO :2 et/ou SEQ ID NO :3 ; - la zone de marquage de S. aureus comprenne un marqueur couplé à un ligand spécifique de S. aureus ou un marqueur couplé à une protéine spécifique comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec SEQ ID NO :4 et/ou SEQ ID NO :5 ; - la zone de détection de S. uberis comprenne un marqueur couplé à un ligand spécifique de S. uberis ou un marqueur couplé à une protéine spécifique comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec SEQ ID NO :1 et/ou SEQ ID NO :2 et/ou SEQ ID NO :3, - la zone de détection de S. aureus comprenne un marqueur couplé à un ligand spécifique de S. aureus ou un marqueur couplé à une protéine spécifique comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec SEQ ID NO :4 et/ou SEQ ID NO :5. Le tableau 1 présente différents types de Duplex LFA qui peuvent par exemple être réalisés, dans lequel : - le ligand spécifique de la bactérie d’intérêt, S. uberis ou S. aureus peut être au moins un anticorps dirigé contre la bactérie d’intérêt, au moins un aptamère spécifique de la bactérie d’intérêt, au moins un bactériophage spécifique de la bactérie d’intérêt, au moins une protéine d’au moins un bactériophage spécifique de la bactérie d’intérêt, au moins un bactériophage spécifique de la bactérie d’intérêt couplé à un anticorps dirigé contre la bactérie d’intérêt, au moins une protéine d’un bactériophage spécifique de la bactérie d’intérêt couplée à un anticorps dirigé contre la bactérie d’intérêt. En particulier, ladite au moins une protéine d’au moins un bactériophage spécifique de la bactérie d’intérêt est une protéine RBP. - la protéine spécifique peut être pour S. uberis une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et/ou d’une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :2, et/ou d’une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :3, en particulier il peut s’agir de la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :2, et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :3 ; et pour S. aureus la protéine spécifique peut être une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 4 et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :5, en particulier il peut s’agir de la protéine de séquence SEQ ID NO :4 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :5. La zone de détection de S. uberis et la zone de détection de S. aureus sont distinctes l’une de l’autre, c’est-à-dire qu’elles ne se chevauchent pas. La première partie de marquage et la deuxième partie de marquage peuvent être interverties par rapport au sens de migration. De même, les zones de détection peuvent être dans un ordre ou dans l’autre selon le sens de migration. Ainsi, dans un mode de réalisation particulier, une telle bandelette comprend dans l’ordre au moins : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une première partie de marquage qui comprend une zone de marquage de S. uberis avec un marqueur, en particulier une nanoparticule d’or ou une bille de latex colorée, conjugué à une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :2, et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :3, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :2, et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :3 ; - une deuxième partie de marquage qui comprend une zone de marquage de S. aureus avec un marqueur, en particulier une nanoparticule d’or ou une bille de latex colorée, conjugué à une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 4 et/ou d’une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :5, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :4 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :5; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :2, et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :3, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :2, et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :3, et comprenant une zone de détection de S. aureus qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 4 et/ou d’une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :5, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :4 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :5 ; - une partie absorbante. En particulier, ladite bandelette pour détecter S. uberis et S. aureus dans un échantillon comprend dans l’ordre au moins : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une première partie de marquage qui comprend une zone de marquage de S. uberis comprenant un marqueur, en particulier une nanoparticule d’or ou une bille de latex colorée, conjugué à une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :2, ladite zone de marquage comprenant optionnellement un marqueur, en particulier une nanoparticule d’or ou une bille de latex colorée, conjugué à une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :1 ; - une deuxième partie de marquage qui comprend une zone de marquage de S. aureus comprenant un marqueur, en particulier une nanoparticule d’or ou une bille de latex colorée, conjugué à une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 4, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :4 et/ou comprenant un marqueur, en particulier une nanoparticule d’or ou une bille de latex colorée, conjugué à une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :5, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :5; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :2, ladite zone de détection de S. uberis comprenant optionnellement une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :1, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :1, et comprenant une zone de détection de S. aureus qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 4 et/ou qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :5, en particulier la zone de détection de S. aureus comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :4 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :5 ; - une partie absorbante. En particulier, ladite bandelette pour détecter S. uberis et S. aureus dans un échantillon comprend dans l’ordre au moins : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une première partie de marquage qui comprend une zone de marquage de S. uberis comprenant un marqueur, en particulier une nanoparticule d’or ou une bille de latex colorée, conjugué à une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :2 et comprenant un marqueur, en particulier une nanoparticule d’or ou une bille de latex colorée, conjugué à une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :1 ; - une deuxième partie de marquage qui comprend une zone de marquage de S. aureus comprenant un marqueur, en particulier une nanoparticule d’or ou une bille de latex colorée, conjugué à une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 4, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :4 et comprenant un marqueur, en particulier une nanoparticule d’or ou une bille de latex colorée, conjugué à une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :5, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :5; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :2, en particulier la zone de détection de S. uberis comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et la protéine de séquence SEQ ID NO :2, et comprenant une zone de détection de S. aureus qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 4 et qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :5, en particulier la zone de détection de S. aureus comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :4 et la protéine de séquence SEQ ID NO :5 ; - une partie absorbante. En particulier, ladite bandelette pour détecter S. uberis et S. aureus dans un échantillon comprend dans l’ordre au moins : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une première partie de marquage qui comprend une zone de marquage de S. uberis avec un marqueur, en particulier une nanoparticule d’or ou une bille de latex colorée, conjugué à un anticorps dirigé contre S. uberis ; - une deuxième partie de marquage qui comprend une zone de marquage de S. aureus avec un marqueur conjugué à un anticorps dirigé contre S. aureus ; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :2, et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :3, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :2, et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :3, et comprenant une zone de détection de S. aureus qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 4 et/ou d’une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :5, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :4 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :5 ; - une partie absorbante. En particulier, ladite bandelette pour détecter S. uberis et S. aureus dans un échantillon comprend dans l’ordre au moins : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une première partie de marquage qui comprend une zone de marquage de S. uberis avec un marqueur, en particulier une nanoparticule d’or ou une bille de latex colorée, conjugué à un anticorps dirigé contre S. uberis ; - une deuxième partie de marquage qui comprend une zone de marquage de S. aureus avec un marqueur conjugué à un anticorps dirigé contre S. aureus ; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, en particulier elle comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :2, ladite zone de détection de S. uberis comprenant optionnellement une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :1, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :1, et comprenant une zone de détection de S. aureus qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 4 et/ou qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :5, en particulier la zone de détection de S. aureus comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :4 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :5 ; - une partie absorbante. En particulier, ladite bandelette pour détecter S. uberis et S. aureus dans un échantillon comprend dans l’ordre au moins : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une première partie de marquage qui comprend une zone de marquage de S. uberis avec un marqueur, en particulier une nanoparticule d’or ou une bille de latex colorée, conjugué à un anticorps dirigé contre S. uberis ; - une deuxième partie de marquage qui comprend une zone de marquage de S. aureus avec un marqueur conjugué à un anticorps dirigé contre S. aureus ; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2 et qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :1, en particulier la zone de détection de S. uberis comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :2 et la protéine de séquence SEQ ID NO :1, et comprenant une zone de détection de S. aureus qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 4 et qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :5, en particulier la zone de détection de S. aureus comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :4 et la protéine de séquence SEQ ID NO :5 ; - une partie absorbante. La présente demande porte également sur un kit de détection de S. uberis et S. aureus dans un échantillon comprenant : 1) Une bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis et S. aureus telle que décrite précédemment comprenant une partie de contact, une partie de marquage, une partie de détection et une partie absorbante telle que décrite ci-dessus ; 2) Un contenant destiné à recevoir l’échantillon. La présente demande porte également sur un procédé de détection de S. uberis et S. aureus dans un échantillon comprenant : - une étape de mise en contact de l’échantillon avec la zone de contact d’une bandelette pour détecter S. uberis et S. aureus comprenant une partie de contact, une partie de marquage, une partie de détection et une partie absorbante telle que décrite précédemment ; - une étape de détection du marqueur sur la zone de détection ; - une étape d’analyse de la présence ou de l’absence de S. uberis et de la présence ou de l’absence de S. aureus dans l’échantillon. Si le marqueur est une nanoparticule d’or ou une bille de latex coloré, la présence de la bactérie se traduira par l’apparition d’une coloration sur la zone de détection. Exemples Production des protéines RBP Les protéines GST-PHIL 2 et GST-P2 sont exprimées dans un plasmide bactérien avec une souche Escherichia coli BL21 star dans un milieu LB (BD, 240230) comprenant 100 mg/L d’ampicilline (Fisher bioreagent, BPHIL 2760-25). L’induction est effectuée quand les bactéries atteignent un densité optique ~ 0.5. Après induction à l’IPTG, les bactéries sont incubées à 25°C, sous agitation. Les cultures sont centrifugées puis resuspendues et concentrées dans un tampon de lyse puis lysées au sonicateur. Les lysats sont ensuite centrifugés à 14000 g pendant 30 minutes. Le surnageant est récupéré et incubé une nuit avec la résine Glutathione Sepharose 4B (Cytiva, 17-0756-01). La résine est ensuite récupérée à l’aide d’une colonne avec un verre fritté, lavée avec le tampon HEPES 50 mM pH7 et ensuite conservées à -80°C. Exemple 1 : Comparaison des différents RBP de S. uberis avec un test ELISA 1.1. Matériel et Méthodes L'ELISA (enzyme-linked immunosorbent assay,) est un dosage immuno-enzymatique sur support solide, basé sur la réaction spécifique antigène-anticorps. Le principe d’un ELISA indirect est de mettre sur une micro-plaque un antigène et ajouter un anticorps primaire dirigé contre cet antigène. Un anticorps secondaire reconnaissant les chaines lourdes du premier anticorps, couplé à une enzyme, est ensuite ajouté. L’ajout du substrat de l’enzyme permet d’obtenir une réaction colorée dosable par absorbance. Pour déterminer la spécificité de la protéine RPB, le principe ELISA a été adapté comme suit. Les bactéries sont fixées au fond des puits d’une micro-plaque (ELISA) à (OD=0,05) pendant 1h30 à 37°C. Une étape de saturation par une solution comprenant de la BSA à 3% et le Tween à 0,05 % est réalisée, puis la solution de BSA est éliminée. Les protéines de phage, sont déposées dans chaque puits de 10 μg/mL dans un tampon PBS (1% BSA ; 0,05% Tween). Une incubation pendant 1h à 37°C est ensuite réalisée. Les puits sont lavés (au moins 5 fois) avec le tampon PBS comprenant le Tween à 0,05%. Une étape d’incubation avec l’anticorps -GST couplée à HRP (Invitrogene, ref, 434323) à 0,25 µg/mL, solution dans tampon PBS 1% BSA, 0,05% Tween20 pendant 1 h à 37°C, puis la streptavidine est éliminée. Les puits sont lavés (au moins 5 fois) avec le tampon PBS comprenant le Tween à 0,05%. Pour la détection, 100 μl d’une solution de TMB sont ajoutés et incubés de 15 à 30 minutes à température ambiante. Puis, 50μl d’acide sulfurique 2 M sont ajoutés pour stopper la réaction. La plaque est ensuite lue à 450nm. L’affinité de la protéine à la bactérie est exprimée par la quantité de protéines retenues par chaque souche bactérienne. Cette quantité est évaluée par l’absorbance liée au anticorps anti-GST couplée à HRP. 1 .2. Protéines RBP testées Plusieurs RBP provenant de phages spécifiques de S. uberis (voir Tableau 2) ont été produites. Pour caractériser la capacité de ces protéines à détecter des souches bactériennes, des tests ELISA ont été réalisés. 1. 3 . Résultats de s protéines RBP seules ou en combin aison Les protéines RBP P3 et SUB4 ont ensuite été testées seules ou en combinaison sur une trentaine souches de S. uberis . Les données d’absorbance obtenues sont reportées dans le Tableau 3. Toutes les valeurs d’absorbance supérieures ou égales à 0,5 sont considérées comme étant des valeurs significatives. Sur 30 souches de S. uberis testées, 24 souches sont reconnues par la protéine P3 (80%), 20 souches par la protéine SUB4 (66,7%) et le mélange des protéines P3 et SUB4 permet de détecter 25 souches (83,3%). De ce fait, le mélange des deux protéines a permis d’atteindre une couverture de 83%. Ces résultats ont été confirmés pour la détection par la méthode LFA (présentée ci-après). Exemple 2 : Détection des souches de S. uberis avec un dispositif LFA (Lateral Flow Assay) comprenant les protéines RBP 2.1. Co mposition du dispositif LFA Des dispositifs de chromatographie à flux latéral (Lateral Flow Assay_LFA) ont été réalisés en utilisant les protéines RBP P3 et SUB4. Le dispositif LFA ou bandelette 1 a été conçu de la manière suivante avec 4 parties : - une partie de contact 2 : partie en contact avec la solution à analyser ; - une partie de marquage 7 : partie où sont déposées les protéines RBP conjuguées à des nanoparticules d’or (diamètre 40 nm) au niveau de la zone de marquage 8 ; - une partie de détection 4 comprenant une ligne de test 5 où les protéines RBP sont immobilisées ; - une partie d’absorption 6 pour établir le flux au travers du dispositif depuis la partie de contact 2. 2.2. Mise en œuvre du dispositif LFA pour la détection de S. uberis Les souches bactériennes de S. uberis sont ensemencées sur boites de Pétri et incubées toute une nuit à l’étuve à 37°C. Le lendemain, les bactéries sont resuspendues dans du tampon PBS stérile et la DO est lue à 600nm. Des suspensions bactériennes à la concentration de bactéries voulue sont préparées dans du PBS 1X comprenant 10% de lait UHT entier et 1% de tween20. Une solution sans bactéries est également réalisée pour servir de témoin négatif (blanc). Pour chaque suspension préparée, 250µl sont prélevés puis déposés dans les puits d’une plaque 96 puits. Des bandelettes telles que décrites ci-dessus sont utilisées. Les différentes configurations répertoriées dans le tableau 4 sont testées avec les protéines RBP P3 et SUB4. Lorsqu’elles sont utilisées comme conjugué sur la partie de marquage 7, elles sont couplées avec des nanoparticules d’or et lorsqu’elles sont utilisées sur la ligne de test 5 de la partie de détection 4, elles sont en solution dans du PBS 1X à 20 % de saccharose. Chaque bandelette est plongée dans un puit au niveau de la partie de contact 2 et laissée pendant 30 minutes le temps de la migration jusqu’à la ligne de test 5. Les souches de bactéries ont été testés à l’absorbance à DO 600 nm = 1 (équivalent à environ 1.10 9 cfu/ml pour les souches de S . aureus et 1.10 7 cfu/ml pour les souches de S. uberis ) . Le tampon de migration est une solution de PBS 1X, comprenant 10% de lait UHT entier stérile et 1% de tween20. Après la migration, les bandelettes sont prises en photo. 2.3. Résultats Pour la preuve de concept, des dispositifs LFA de configuration 1, 2 et 5 (voir Tableau 4) ont été testés pour la détection des souches S. uberis Duchesse et Galande. Des tests sans bactéries et avec des bactéries non- S. uberis ( S . aureus et E . coli ) ont également été réalisés. Les Figures 1, 2, 3, et 4 montrent que la présence de la protéine SUB4 dans le conjugué permet d’obtenir une meilleure intensité de signal. De plus, les protéines RBP ne détectent rien dans les échantillons comprenant le blanc ou les souches témoins. Cela montre que les protéines RBP déposées sur la bandelette LFA sont fonctionnelles car elles fixent les bactéries cibles. De plus, ces protéines sont capables de migrer sur la membrane utilisée sur la bandelette. Après avoir validé le concept de détection des souches de S. uberis sur des bandelettes LFA grâce à des protéines RBP, des tests ont été réalisés sur d’autres souches de S. uberis en utilisant des configurations supplémentaires. La FIG. 5 partie A montre que lorsque P3 est seul sur la ligne de test 5, seule la souche 9038 est très bien détectée sur les 8 souches de S. uberis . La FIG. 5 partie B montre que l’utilisation de la protéine SUB4 seule dans le conjugué et sur la ligne de test permet de détecter 7 souches testées sur 8. La souche 1912c n’est pas reconnue mais toutefois, cette dernière a pu être faiblement détectée lorsque la ligne de test 5 contient les protéines P3 et SUB4. De ce fait, le mélange des deux protéines RBP a permis de détecter plus de souches que l’utilisation d’une seule protéine sur la ligne de test 5 ( FIG. 5 partie C). Le mélange des deux protéines a ensuite été utilisés comme conjugué et également sur la ligne de test 5 pour la détection de 30 souches de S. uberis . On observe sur la FIG. 6 que l’utilisation du mélange de protéines P3 et SUB4 dans le conjugué et sur la ligne de test 5 permet d’augmenter l’intensité de signal de toutes les souches de S. uberis utilisées dans l’expérience précédente. Sur les 30 souches de S. uberis testées, 28 ont pu être détectées grâce à l’utilisation du mélange de protéines RBP. Ce système permet de reconnaitre plus de 90% des souches testées. Exemple 3 : Système LFA avec croissance de S. uberis et ajout de gélose sur la zone de détection (ligne de test) 3 .1. Concept de la détection avec croissance bactérienne Le concept de la méthode LFA avec croissance de bactéries sur la zone de détection 5 (ligne de test) comprend les étapes suivantes : 1) Le dispositif LFA 1 comprend une partie de contact 2, une partie de détection 4 et une partie d’absorption 6. Il ne comprend pas de partie de marquage 7. L’échantillon à tester migre directement à travers la partie de détection 4 qui comprend une zone de détection 5 ou ligne de test où est immobilisé par adsorption un ligand spécifique de la bactérie d’intérêt ; 2) Lorsque la bactérie d’intérêt arrive par capillarité sur la ligne de test 5, elle est capturée par les ligands sur la membrane ; 3) A la fin de la migration, une gélose nutritive est déposée sur la ligne de test 5 ; 4) Optionnellement, des éléments chromogènes peuvent être ajoutés dans la gélose pour améliorer la détection de la multiplication de la bactérie d’intérêt. 3 .2. Détection de S. uberis avec le système LFA avec croissance de bactéries sur la zone de détection 250 µl de suspension bactérienne dans du PBS 1X + lait UHT entier 10 % + TWEEN 20 1% à la concentration bactérienne désirée sont placés dans un puit d’une plaque de 96 puits. Un dispositif LFA comprenant au niveau de la partie de détection, une ligne de test 5 avec les protéines RBP SUB4 et P3 (1 µl déposé ; composition : 0.625 mg/ml de la protéine SUB4, 0.625 mg/ml de la protéine P3, PBS 1X, 10 % saccharose). La bande est plongée au niveau de la partie de contact 2 pendant 30 minutes dans le puit comprenant l’échantillon à tester. Après la migration, la ligne de test 5 est découpée, et est soit déposée : - sur une gélose en boite de Pétri ( FIG. 7 A) comprenant du BHI 1X, du tellurite de potassium à 75 µM et de l’agar à 1.5%. - dans une cassette ( FIG. 7 B). La bande est fixée avec du scotch double-face à l’intérieur de la cassette. La cassette est ensuite fermée. Une gélose comprenant du BHI 1X, du tellurite de potassium à 75 µM et de l’agar à 0.4% est déposée sur la bande emprisonnée dans la cassette avec une pipette. Un film adhésif (ThermoFischer Scientific – 15036) est utilisé pour protéger la gélose ajoutée de l’environnement et de l’évaporation. Le tellurite de potassium est utilisé comme élément chromogène pour améliorer la détection de la multiplication bactérienne. Les bandes sont ensuite incubées à 37°C pendant 15 heures et une photo est ensuite réalisée. Les photos en FIG. 7 montrent bien que dans l’échantillon sans bactérie, aucune ligne noire apparait ce qui traduit l’absence de bactérie immobilisée sur la ligne de test. En revanche, pour les échantillons comprenant de S. uberis testées à 1.10 4 cfu/ml et, une ligne noire est apparue au niveau de la ligne de test correspondant à la multiplication de la bactérie d’intérêt S. uberis et de la réduction du tellurite en tellure, élément chromogène améliorant la visibilité du résultat. Exemple 4 : Dispositif LFA duplex pour la détection simultanée de S. uberis et S. aureus 4 .1. Co mposition du dispositif LFA Le dispositif LFA ou bandelette 1 a été conçu de la manière suivante : - une partie de contact 2 : partie en contact 2 avec la solution à analyser. - une partie de marquage 7 n°1: partie où sont déposées les protéines RBP P3 et SUB4 spécifiques de S. uberis , conjuguées à des nanoparticules d’or (diamètre 40 nm) - une partie de marquage 7 n°2 : partie où sont déposées les protéines RBP PHIL 2 et PHIL 5 spécifiques de S. aureus , conjuguées à des nanoparticules d’or (diamètre 40 nm) - une partie de détection 4 comprenant une ligne de test 5 n°1 où les protéines RBP P3 et SUB4 spécifiques de S. uberis sont immobilisées, et comprenant une ligne de test 5 n°2 où les protéines RBP PHIL 2 et PHIL 5 spécifiques de S. aureus sont immobilisées ; - une partie d’absorption 6 pour établir le flux au travers du dispositif depuis la partie de contact 2. 4 .2. Mise en œuvre du dispositif LFA pour la détection de S. uberis et S. aureus Les souches bactériennes de S. uberis et S. aureus sont ensemencées sur boites de Pétri et incubées toute une nuit à l’étuve à 37°C. Le lendemain, les bactéries sont resuspendues dans du tampon PBS stérile et la DO est lue à 600nm. Des suspensions bactériennes de S. aureus, S. uberis ou S. aureus + S. uberis à la concentration de bactéries voulue sont préparées dans du PBS 1X comprenant 10% de lait UHT entier et 1% de tween20. Une solution sans bactéries est également réalisée pour servir de témoin négatif (blanc). Pour chaque suspension préparée, 250µl sont prélevés puis déposés dans les puits d’une plaque 96 puits. Des bandelettes telles que décrites ci-dessus sont utilisées. Les protéines RBP P3 et SUB4 spécifiques de S. uberis sont immobilisées sur la ligne de test 5 n°1 (1 µl déposé d’une solution à 0,625 mg/ml de P3, 0,625 mg/ml de SUB4, PBS 1X comprenant 10% de saccharose), et les protéines RBP spécifiques de S. aureus PHIL 2 et PHIL 5 sont immobilisées sur la ligne de test 5 n°2 (1 µl déposé d’une solution à 0,75 mg/ml de PHIL 2, 0,75 mg/ml de PHIL 5, PBS 1X comprenant 10% de saccharose). Pour leur immobilisation elles sont couplées avec de la GST. Sur la partie de marquage 7 n°1 sont déposés 6 µl d’une solution de protéines RBP P3 spécifiques de S. uberis , conjuguées à des nanoparticules d’or (diamètre 40 nm). La solution protéique est à une DO=10 avec 20% de saccharose, 0,25% BSA et PBS1X. Sur la partie de marquage 7 n°2 sont déposés 6 µl d’une solution de protéines RBP PHIL 2 et PHIL 5 spécifiques de S. aureus , conjuguées à des nanoparticules d’or (diamètre 40 nm). La solution protéique est à une DO=10 avec 20% de saccharose, 0,5% BSA et PBS1X. Les deux parties de marquage 7 sont de référence identique (Ahlstrom-Grade 800). Chaque bandelette 1 est plongée dans un puit au niveau de la partie de contact 2 et laissée pendant 30 minutes le temps de la migration jusqu’à la ligne de test 5. Les souches de bactéries ont été testées à l’absorbance à DO 600 nm = 1 (équivalent à environ 1.10 9 cfu/ml pour les souches de S . aureus et 1.10 9 cfu/ml pour les souches de S. uberis ). Le tampon de migration est une solution de PBS 1X, comprenant 10% de lait UHT entier stérile et 1% de tween20. Après la migration, les bandelettes sont prises en photo. 4 .3. Résultats Comme montré en FIG. 8 , avec le puit sans bactérie, seul la ligne de contrôle 9 est visible. Avec un échantillon contenant S. uberis , deux lignes apparaissent : le ligne de contrôle 9 et la ligne de test 5 de S. uberis . Avec un échantillon, contenant seulement S. aureus , deux lignes apparaissent : la ligne de contrôle 9 et la ligne de test 5 de S. aureus . Avec un échantillon contenant les deux bactéries, les 3 lignes de tests apparaissent. Cela montre bien que ce dispositif est apte à la détection simultanée de S. aureus et de S. uberis . Exemple 5 : Dispositif LFA duplex pour la détection simultanée de S. uberis et S. aureus 5 .1. Co mposition du dispositif LFA Le dispositif LFA ou bandelette 1 a été conçu de la manière suivante : - une partie de contact 2 : partie en contact 2 avec la solution à analyser. - une partie de marquage 7 n°1: partie où sont déposées les protéines RBP P3 et SUB4 spécifiques de S. uberis , conjuguées à des billes de latex de diamètre 400 nm ; - une partie de marquage 7 n°2 : partie où sont déposées les protéines RBP PHIL 2 et PHIL 5 spécifiques de S. aureus , conjuguées à des billes de latex ; - une partie de détection 4 comprenant une ligne de test 5 n°1 où les protéines RBP P3 et SUB4 spécifiques de S. uberis sont immobilisées, et comprenant une ligne de test 5 n°2 où les protéines RBP PHIL 2 et PHIL 5 spécifiques de S. aureus sont immobilisées ; - une partie d’absorption 6 pour établir le flux au travers du dispositif depuis la partie de contact 2. 5 .2. Mise en œuvre du dispositif LFA pour la détection de S. uberis et S. aureus Les souches bactériennes de S. uberis et S. aureus sont ensemencées sur boites de Pétri et incubées toute une nuit à l’étuve à 37°C. Le lendemain, les bactéries sont resuspendues dans du tampon PBS stérile et la DO est lue à 600nm. Des suspensions bactériennes de S. aureus, S. uberis ou S. aureus + S. uberis à la concentration de bactéries voulue sont préparées dans du PBS 1X comprenant 10% de lait UHT entier et 1% de tween20. Une solution sans bactéries est également réalisée pour servir de témoin négatif (blanc). Pour chaque suspension préparée, 250µl sont prélevés puis déposés dans les puits d’une plaque 96 puits. Des bandelettes telles que décrites ci-dessus sont utilisées. Les protéines RBP P3 et SUB4 spécifiques de S. uberis sont immobilisées sur la ligne de test 5 n°1 (1 µl déposé d’une solution à 0,625 mg/ml de P3, 0,625 mg/ml de SUB4, PBS 1X comprenant 10% de saccharose), et les protéines RBP spécifiques de S. aureus PHIL 2 et PHIL 5 sont immobilisées sur la ligne de test 5 n°2 (1 µl déposé d’une solution à 0,75 mg/ml de PHIL 2, 0,75 mg/ml de PHIL 5, PBS 1X comprenant 10% de saccharose). Pour leur immobilisation elles sont couplées avec de la GST. Sur la partie de marquage 7 n°1 sont déposés 6 µl d’une solution de protéines RBP P3 et SUB4 spécifiques de S. uberis , conjuguées à des billes de latex. La solution protéique est à une DO=10 avec 20% de saccharose, 0 ;25% BSA et PBS1X. Sur la partie de marquage 7 n°2 sont déposés 6 µl d’une solution de protéines RBP PHIL 2 et PHIL 5 spécifiques de S. aureus , conjuguées à billes de latex. La solution protéique est à une DO=10 avec 20% de saccharose, 0 ;25% BSA et PBS1X. Les deux parties de marquage sont de référence identique (Ahlstrom-Grade 800). Chaque bandelette 1 est plongée dans un puit au niveau de la partie de contact 2 et laissée pendant 30 minutes le temps de la migration jusqu’à la ligne de test 5. Les souches de bactéries ont été testées à l’absorbance à DO 600 nm = 1 (équivalent à environ 1.10 9 cfu/ml pour les souches de S . aureus et 1.10 9 cfu/ml pour les souches de S. uberis ). Le tampon de migration est une solution de PBS 1X, comprenant 10% de lait UHT entier stérile et 1% de tween20. Après 30 min de migration, les bandelettes sont prises en photo. 5.3. Résultats Comme montré en FIG. 9 , avec un échantillon contenant S. uberis , la ligne de test 5 de S. uberis apparait. Avec un échantillon, contenant seulement S. aureus , la ligne de test 5 de S. aureus apparait. Avec un échantillon contenant les deux bactéries, les 2 lignes de tests apparaissent. Cela montre bien que ce dispositif est apte à la détection simultanée de S. aureus et de S. uberis . Exemple 6 : Dispositif LFA duplex pour la détection simultanée de S. uberis et S. aureus 6 .1. Co mposition du dispositif LFA Le dispositif LFA ou bandelette a été conçu de la manière suivante : - une partie de contact 2: partie en contact avec la solution à analyser. - une partie de marquage 7 n°1: partie où sont déposées les protéines RBP P3 et SUB4 spécifiques de S. uberis , conjuguées à des billes de latex de diamètre 400 nm ; ; - une partie de marquage 7 n°2 : partie où est déposé un anticorps anti- S. aureus , conjuguées à des billes de latex ; - une partie de détection 4 comprenant une ligne de test 5 n°1 où les protéines RBP P3 et SUB4 spécifiques de S. uberis sont immobilisées, et comprenant une ligne de test 5 n°2 où les protéines RBP PHIL 2 et PHIL 5 spécifiques de S. aureus sont immobilisées ; - une partie d’absorption 6 pour établir le flux au travers du dispositif depuis la partie de contact 2. 6 .2. Mise en œuvre du dispositif LFA pour la détection de S. uberis et S. aureus Les souches bactériennes de S. uberis e t S. aureus sont ensemencées sur boites de Pétri et incubées toute une nuit à l’étuve à 37°C. Le lendemain, les bactéries sont resuspendues dans du tampon PBS stérile et la DO est lue à 600nm. Des suspensions bactériennes de S. aureus, S. uberis ou S. aureus + S. uberis à la concentration de bactéries voulue sont préparées dans du PBS 1X comprenant 10% de lait UHT entier et 1% de tween20. Une solution sans bactéries est également réalisée pour servir de témoin négatif (blanc). Pour chaque suspension préparée, 250µl sont prélevés puis déposés dans les puits d’une plaque 96 puits. Des bandelettes telles que décrites ci-dessus sont utilisées. Les protéines RBP P3 et SUB4 spécifiques de S. uberis sont immobilisées sur la ligne de test 5 n°1 (1 µl déposé d’une solution à 0,625 mg/ml de P3, 0,625 mg/ml de SUB4, PBS 1X comprenant 10% de saccharose), et les protéines RBP spécifiques de S. aureus PHIL 2 et PHIL 5 sont immobilisées sur la ligne de test 5 n°2 (1 µl déposé d’une solution à 0,75 mg/ml de PHIL 2, 0,75 mg/ml de PHIL 5, PBS 1X comprenant 10% de saccharose). Pour leur immobilisation elles sont couplées avec de la GST. Sur la partie de marquage 7 n°1 sont déposés 6 µl d’une solution de protéines RBP P3 et SUB4 spécifiques de S. uberis , conjuguées à des billes de latex. La solution protéique est à une DO=10 avec 20% de saccharose, 0.25% BSA et PBS1X. Sur la partie de marquage 7 n°2 est déposé un anticorps anti- S. aureus conjugué à billes de latex. Les deux parties de marquage sont de référence identique (Ahlstrom-Grade 800). Chaque bandelette est plongée dans un puit au niveau de la partie de contact 2 et laissée pendant 30 minutes le temps de la migration jusqu’à la ligne de test 5. Les souches de bactéries ont été testées à l’absorbance à DO 600 nm = 1 (équivalent à environ 1.10 9 cfu/ml pour les souches de S . aureus et 1.10 9 cfu/ml pour les souches de S. uberis ). Le tampon de migration est une solution de PBS 1X, comprenant 10% de lait UHT entier stérile et 1% de tween20. Après 30 min de migration, les bandelettes sont prises en photo. 6.3. Résultats Comme montré en FIG. 10 , avec un échantillon contenant S. uberis, la ligne de test 5 de S. uberis apparait. Avec un échantillon, contenant seulement S. aureus, la ligne de test 5 de S. aureus apparait. Avec un échantillon contenant les deux bactéries, les 2 lignes de tests apparaissent. Cela montre bien que ce dispositif est apte à la détection simultanée de S. aureus et de S. uberis . Exemple 7 : Dispositif LFA duplex pour la détection simultanée de S. uberis et S. aureus avec croissance bactérienne et ajout de l’échantillon à un milieu nutritif 7 .1. Co mposition du dispositif LFA Le dispositif LFA ou bandelette 1 a été conçu de la manière suivante : - une partie de contact 2 : partie en contact avec la solution à analyser. - une partie de détection 4 comprenant une ligne de test 5 n°1 où les protéines RBP P3 et SUB4 spécifiques de S. uberis sont immobilisées, et comprenant une ligne de test 5 n°2 où les protéines RBP PHIL2 et PHIL5 spécifiques de S. aureus sont immobilisées ; - une partie d’absorption 6 pour établir le flux au travers du dispositif depuis la partie de contact 2. 7 .2. Mise en œuvre du dispositif LFA 250 µl de suspension bactérienne dans du PBS 1X + lait UHT entier 10 % + TWEEN 20 1% à la concentration bactérienne désirée sont placés dans un puit d’une plaque de 96 puits. Un dispositif LFA 1 comprenant au niveau de la partie de détection 4, une ligne de test 5 avec les protéines RBP SUB4 et P3 spécifique de S. uberis (1 µl déposé ; composition : 0.625 mg/ml de la protéine SUB4, 0.625 mg/ml de la protéine P3, PBS 1X, 20 % saccharose), et une deuxième ligne de test 5 avec les protéines RBP PHIL 2 et PHIL 5 spécifiques de S. aureus . La bande est plongée au niveau de la partie de contact 2 pendant 30 minutes dans le puit contenant l’échantillon à tester. Après la migration, la ligne de test est découpée, et est déposée sur une gélose en boite de Pétri comprenant du BHI 1X, du tellurite de potassium à 75 µM et de l’agar à 1.5%. Les bandes sont ensuite incubées à 37°C pendant 15 heures et une photo est ensuite réalisée. Les résultats en FIG. 1 1 montrent qu’avec l’échantillon sans bactérie, aucune ligne noire apparait ce qui traduit l’absence de bactérie immobilisé sur la ligne de test 5. En revanche, avec l’échantillon contenant des bactéries S. uberis , l’apparition d’une ligne noire au niveau de la ligne de test 5 de S. uberis est visible, ce qui correspondant à la multiplication de la bactérie et de la réduction du tellurite en tellure, élément chromogène améliorant la visibilité du résultat. De la même façon, avec l’échantillon contenant des bactéries S. aureus , on observe l’apparition d’une ligne noire au niveau de la ligne de test 5 de S. aureus , traduisant ainsi la multiplication de la bactérie et de la réduction du tellurite en tellure. Enfin, avec l’échantillon contenant S. uberis et S. aureus , deux lignes noires sont observées et témoignent donc de la présence de ces deux bactéries dans l’échantillon. Exemple 8 : Dispositif LFA pour la détection de S. uberis avec croissance bactérienne et ajout de l’échantillon à un milieu nutritif 8.1. Concept du d ispositif LFA L’échantillon à tester est supplémenté d’un milieu nutritif comprenant du tellurite de potassium dans un ratio 1/20. La partie de contact 2 d’une bandelette LFA 1 est immergée dans le mélange. Les bactéries migrent et sont captées à la ligne de test 5 où les protéines de RBP spécifiques de S. uberis sont fixées. Le tout est réalisé dans un tube qui est ensuite fermé hermétiquement pour éviter que la membrane se dessèche. Les bactéries captées se développement et hydrolysent le composé pour tellure de couleur noire. A noter que le dispositif LFA 1 ne comporte pas de partie de marquage 7. 8.2. Mise en œuvre du dispositif LFA Le dispositif LFA ou bandelette 1 a été conçu de la manière suivante : - une partie de contact 2 : partie en contact avec la solution à analyser ; - une partie de détection 4 comprenant une ligne de test 5 où les protéines RBP P3 et SUB4 spécifiques de S. uberis sont immobilisées (1 µl déposé ; composition : 0.625 mg/ml de la protéine SUB4, 0.625 mg/ml de la protéine P3, PBS 1X, 10 % saccharose) ; - une partie d’absorption 6 pour établir le flux au travers du dispositif depuis la partie de contact. Dans un tube, 25 µl de lait cru contaminé avec une concentration de Streptococcus connue était ajouté à 500 µl d’un tampon composé de bouillon cœur cervelle 1X, TWEEN 20 1 % et de telluride de potassium à 20 mg/ml. Après mélange du lait et du tampon, la bandelette 1 est plongée dans le tampon au niveau de la partie de contact 2. Le tube est refermé et incubé à 37°C pendant 15 heures. Après les 15 h d’incubation, le résultat est lu. La présence d’une bande noire au niveau de la ligne de test révèle la présence de S. uberis dans l’échantillon testé ( FIG. 1 2). Exemple 9 : Dispositif LFA Duplex pour la détection simultanée de S. uberis et de S. aureus avec croissance bactérienne et ajout de l’échantillon à un milieu nutritif 9 .1. Co mposition du dispositif LFA Le dispositif LFA ou bandelette 1 a été conçu de la manière suivante : - une partie de contact 2 : partie en contact avec la solution à analyser. - une partie de détection 4 comprenant une ligne de test 5 n°1 où les protéines RBP P3 et SUB4 spécifiques de S. uberis sont immobilisées (1 µl déposé ; composition : 0.625 mg/ml de la protéine SUB4, 0.625 mg/ml de la protéine P3, PBS 1X, 20 % saccharose), et comprenant une ligne de test 5 n°2 où les protéines RBP PHIL 2 et PHIL 5 spécifiques de S. aureus sont immobilisées (1 µl déposé ; composition : 0,75 mg/ml de la protéine PHIL 5 et 0,25 mg/ml de la protéine PHIL 2, PBS 1X, 10 % saccharose) ; - une partie d’absorption 6 pour établir le flux au travers du dispositif depuis la partie de contact 2. Un anticorps anti-lapin est déposé sur la ligne de contrôle 9. 9 .2. Mise en œuvre du dispositif LFA pour la détection de S. uberis et S. aureus Dans un tube, 25 µl de lait cru contaminé avec une concentration de Streptococcus connue était ajouté à 500 µl d’un tampon composé de bouillon cœur cervelle 1X, TWEEN 20 1 % et de telluride de potassium à 20 mg/ml. Après mélange du lait et du tampon, la bandelette 1 est plongée dans le tampon au niveau de la partie de contact 2. Le tube est refermé et incubé à 37°C pendant 15 heures. Après les 15 h d’incubation, le résultat est lu. Les résultats en FIG. 13 montrent qu’avec l’échantillon sans bactérie, aucune ligne noire apparait ce qui traduit l’absence de bactérie immobilisé sur la ligne de test 5. En revanche, avec l’échantillon contenant des bactéries S. uberis, l’apparition d’une ligne noire au niveau de la ligne de test 5 de S. uberis est visible, ce qui correspondant à la multiplication de la bactérie et de la réduction du tellurite en tellure, élément chromogène améliorant la visibilité du résultat. De la même façon, avec l’échantillon contenant des bactéries S. aureus, on observe l’apparition d’une ligne noire au niveau de la ligne de test 5 de S. aureus, traduisant ainsi la multiplication de la bactérie et de la réduction du tellurite en tellure. Enfin, avec l’échantillon contenant S. uberis et S. aureus, deux lignes noires sont observées et témoignent donc de la présence de ces deux bactéries dans l’échantillon. Protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO : 2. Composition comprenant : - une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO : 1, et - une protéine RBP comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO : 2. Utilisation de la protéine selon la revendication 1 pour la capture de Streptococcus uberis dans un échantillon. Utilisation de la composition selon la revendication 2 pour la capture de Streptococcus uberis dans un échantillon. Utilisation de la protéine selon la revendication 1 pour la détection de Streptococcus uberis dans un échantillon. Utilisation de la composition selon la revendication 2 pour la détection de Streptococcus uberis dans un échantillon. Utilisation selon la revendication 5 ou 6, dans laquelle la détection est réalisée par ELISA, chromatographie à flux latéral ou chromatographie à flux latéral avec croissance bactérienne. Bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis dans un échantillon, comprenant au moins une partie qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, en particulier ladite au moins une partie comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :2. Bandelette de chromatographie à flux latéral selon la revendication 8, comprenant dans l’ordre : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, en particulier elle comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :2, ladite zone de détection comprenant optionnellement une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :1 ; - une partie absorbante. Bandelette de chromatographie à flux latéral selon la revendication 8, comprenant dans l’ordre : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une partie de marquage comprenant une zone de marquage qui comprend un marqueur ; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, en particulier elle comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :2, ladite zone de détection comprenant optionnellement une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :1 ; - une partie absorbante ; ledit marqueur étant conjugué à un ligand spécifique de S. uberis choisi parmi au moins un anticorps dirigé contre S. uberis , au moins un aptamère spécifique de S. uberis , au moins un bactériophage spécifique de S. uberis , au moins une protéine d’au moins un bactériophage spécifique S. uberis , au moins un bactériophage spécifique de S. uberis couplé à un anticorps dirigé contre S. uberis , au moins une protéine d’un bactériophage spécifique de S. uberis couplée à un anticorps dirigé contre S. uberis , en particulier ladite au moins une protéine d’au moins un bactériophage spécifique de S. uberis est une protéine RBP, plus particulièrement, une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1 et/ou une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, en particulier il s’agit de la protéine de séquence SEQ ID NO :1 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :2, en particulier ledit marqueur est une nanoparticule d’or ou une bille de latex colorée. Bandelette de chromatographie à flux latéral selon la revendication 8, comprenant dans l’ordre : - une partie de contact comprenant une zone de contact avec l’échantillon ; - une première partie de marquage qui comprend une zone de marquage de S. uberis comprenant un marqueur, en particulier une nanoparticule d’or ou une bille de latex colorée, conjugué à une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :2, ladite zone de marquage comprenant optionnellement un marqueur, en particulier une nanoparticule d’or ou une bille de latex colorée, conjugué à une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 1, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :1 ; - une deuxième partie de marquage qui comprend une zone de marquage de S. aureus comprenant un marqueur, en particulier une nanoparticule d’or ou une bille de latex colorée, conjugué à une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 4, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :4 et/ou comprenant un marqueur, en particulier une nanoparticule d’or ou une bille de latex colorée, conjugué à une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :5, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :5; - une partie de détection comprenant une zone de détection de S. uberis qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 2, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :2, ladite zone de détection de S. uberis comprenant optionnellement une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :1, en particulier la protéine de séquence SEQ ID NO :1, et comprenant une zone de détection de S. aureus qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO : 4 et/ou qui comprend une protéine comprenant une séquence ayant un pourcentage d’identité d’au moins 70% avec la séquence SEQ ID NO :5, en particulier la zone de détection de S. aureus comprend la protéine de séquence SEQ ID NO :4 et/ou la protéine de séquence SEQ ID NO :5 ; - une partie absorbante. Procédé de détection de S. uberis dans un échantillon comprenant : - une étape de mise en contact de l’échantillon avec la zone de contact d’une bandelette selon la revendication 10; - une étape de détection du marqueur sur la zone de détection ; - une étape d’analyse de la présence ou de l’absence de S. uberis dans l’échantillon. Procédé de détection de S. uberis comprenant : 1) Addition d’un échantillon à tester dans un milieu nutritif comprenant un élément chromogène ; 2) Mise en contact d’une bandelette LFA selon la revendication 9 avec le mélange obtenu à l’étape 1) ; 3) Migration entre 5 et 45 min, en particulier entre 15 et 35 min, plus particulièrement entre 20 et 30 min, de préférence 30 min ; 4) Incuber la bandelette dans le tube fermé à 37°C pendant 15h à 24h, de préférence entre 17h et 20h ; 5) Apparition d’une coloration le long de la ligne de test en cas de présence de S. uberis dans l’échantillon. Procédé de détection de S. uberis et S. aureus dans un échantillon comprenant : - une étape de mise en contact de l’échantillon avec la zone de contact d’une bandelette selon la revendication 11 ; - une étape de détection du marqueur sur la zone de détection ; - une étape d’analyse de la présence ou de l’absence de S. uberis et de la présence ou de l’absence de S. aureus dans l’échantillon. Kit de détection de S. uberis comprenant : 1) Une bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis selon la revendication 9 ; 2) Un tube capable de fermer hermétiquement ; 3) Une fiole comprenant le milieu nutritif avec un élément chromogène, en particulier le tellurite de potassium. Kit de détection de S. uberis ou de détection de S. uberis et S. aureus comprenant : 1) Une bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis selon la revendication 10 ou une bandelette de chromatographie à flux latéral pour détecter S. uberis et S. aureus selon la revendication 11 ; 2) Un contenant destiné à recevoir l’échantillon.