Brevet FR3160016A1 — publié le 20250912

L’invention concerne un dispositif portable pour tester simultanément plusieurs substances psychoactives dans des boissons. Le dispositif comprend un boîtier avec une chambre interne conçue pour loger au moins une bandelette de test. Cette bandelette possède un tampon d'échantillon pour absorption de la boisson testée, suivie de zones de détection successives pour identifier différentes substances psychoactives. Le boîtier se divise en une partie arrière et une partie avant amovible, séparables le long d'une zone prévue pour la rupture. Une fois séparée, la partie avant permet au tampon d'échantillon de dépasser pour faciliter l'imprégnation par l'échantillon de boisson. Dispositif portable de test pour la détection simultanée de plusieurs substances psychoactives dans un échantillon de boisson. Domaine technique. La présente invention concerne un dispositif portable de test pour la détection simultanée de plusieurs substances psychoactives dans un échantillon de boisson. L’invention vise également l'utilisation dudit dispositif portable pour la détection simultanée de substances psychoactives dans un échantillon de boisson. La présente invention concerne de manière générale le domaine de la détection de substances chimiques dans des liquides, et plus particulièrement celui des dispositifs et procédés de détection rapide et discrète des substances psychoactives souvent utilisées dans la soumission chimique. État de la technique. La soumission chimique, pratique criminelle consistant à administrer à une personne, à son insu et sans son consentement, des substances psychoactives pour la manipuler ou l'agresser, constitue un problème social croissant et préoccupant. Les conséquences sur les victimes sont dévastatrices, affectant gravement leur santé physique et mentale. Les substances communément utilisées dans ces actes incluent la kétamine, le GHB (gamma-hydroxybutyrate), le GBL (gamma-butyrolactone, un précurseur du GHB), le 1,4-butanediol, ainsi que divers opioïdes comme la morphine, l'héroïne et le fentanyl. Les benzodiazépines, notamment le Rohypnol (Flunitrazepam), sont également employées à cette fin. Ingérées, ces substances agissent rapidement, souvent en moins de 30 minutes, provoquant relaxation musculaire, désinhibition, passivité et perte de volonté de résister à un agresseur. De plus, d'autres substances telles que les (méth)amphétamines notamment, l’amphétamine, la méthamphétamine, la 3,4-méthylènedioxy-méthamphétamine (MDMA, aussi connue sous le nom d'Ecstasy), la méthylènedioxyamphétamine (MDA) et la 2,5-diméthoxy-4-éthoxyamphétamine (MEM) sont également utilisées à ces fins. L'administration secrète de ces substances, fréquemment dissimulées dans des boissons et ingérées à l'insu des victimes, pose un défi majeur en matière de détection et de prévention, rendant impératif le développement de dispositifs et de procédés de détection rapides, discrets et efficaces. Les techniques actuelles de détection, telles que la spectroscopie UV, la spectrométrie de masse et la chromatographie en couche mince, offrent une grande précision mais présentent des inconvénients majeurs : elles sont complexes, coûteuses à exploiter et à entretenir, et nécessitent généralement un équipement volumineux et un personnel qualifié. De plus, ces techniques ne sont pas adaptées à une utilisation sur place, dans des contextes où la discrétion et la facilité d'utilisation sont primordiales. Il est donc souhaitable de proposer un moyen de test qui permettra aux utilisateurs de tester leur boisson pour déterminer si elle est potable. Les avantages de ce système incluent le fait que l’utilisateur sait qu’il est en sécurité. Un autre avantage d’une méthode de test est que lorsque la présence d’une substance psychoactive est détectée, il est possible que l’auteur de l’infraction puisse être identifié. Un tel dispositif pourrait également être utilisé par les autorités pour contrôler les boissons sur les lieux d'une infraction présumée. Au regard de cette nécessité, l'état de l'art révèle l'existence de différents dispositifs de détection qui peuvent être utilisés sur le site et au moment de la consommation de la boisson, tels qu’illustrés par des documents de brevets tels que US 8,563,317 ; US10,016,315 ; US 11,131,669 ; US 2001/0046710 ; US 2003/0044989 ; US 2008/0102482 ; US2011/0039346 ; US2008/0286816 ; US2018/0321212. En particulier, les documents de brevets US10,016,315 ; et US2018/0321212 décrivent des dispositifs de tests portables qui peuvent être utilisés pour détecter des analytes, tels que des substances psychotropes (par exemple des benzodiazépines) dans des boissons. Ces dispositifs de tests sont basés sur un test de flux latéral comprenant une membrane chromatographique, laquelle membrane comprend: - une zone d'échantillon destiné à recevoir un échantillon de la boisson à tester, - une zone de conjugaison adjacente et en communication fluide avec la zone d’échantillon, ladite zone de conjugaison comprenant des anticorps anti-analyte (par exemple un anticorps anti-benzodiazépines) ; - une zone de détection adjacente et en communication fluide avec la zone de conjugaison, ladite zone de détection comprenant au moins une ligne de capture comprenant au moins une protéine couplée à l’analyte cible ;et - optionnellement, une zone de contrôle, adjacente et en communication fluide avec la zone de conjugaison, ladite zone de contrôle comprenant au moins une ligne de contrôle comprenant un anticorps anti-espèce. Les dispositifs de tests décrits dans ces documents de brevets US10,016,315 ; et US2018/0321212 présentent des avantages certains, notamment leur rapidité et leur discrétion. Ils permettent à une personne de tester sa boisson avant de la consommer, ce qui constitue une première étape importante dans la prévention de la soumission chimique. Cependant, ces dispositifs présentent également une limitation majeure : ils ne permettent de tester qu'un seul type d'analyte à la fois. Compte tenu de ce qui précède, un but de la présente invention est de proposer un dispositif de détection capable d'identifier simultanément plusieurs substances psychoactives, y compris des substances psychoactives couramment utilisées dans la soumission chimique telles que la kétamine, le GHB, divers opioïdes et benzodiazépines, à partir d'un seul échantillon de test. Un autre but de l'invention est de proposer un dispositif de détection simple et portable, permettant aux utilisateurs de tester facilement et discrètement leur boisson dans des environnements sociaux pour détecter la présence de substances psychoactives. Un but supplémentaire de l'invention est de fournir un dispositif de détection offrant des résultats rapides, permettant aux utilisateurs d'obtenir des réponses en temps réel ou quasi réel pour agir promptement en cas de détection de substances nocives. Un autre but de l'invention est de rendre les dispositifs de détection accessibles et abordables pour le grand public, favorisant ainsi leur utilisation étendue comme mesure préventive contre la soumission chimique. Présentation de l’invention. La solution proposée par l’invention est un dispositif portable de test pour la détection simultanée de plusieurs substances psychoactives susceptibles d'être contenues dans un échantillon de boisson. Ce dispositif portable est remarquable en ce qu’il comporte un boîtier incluant une chambre interne conçue pour loger au moins une bandelette de test. Cette dernière comprend, en communication fluidique et dans l’ordre suivant : -- un tampon d’échantillon destiné à être imprégné d’un échantillon de boisson à tester ; -- une première zone de détection conçue pour la détection d’une substance psychoactive d’un premier type ; -- une deuxième zone de détection conçue pour la détection d’une substance psychoactive d’un deuxième type. Le dispositif portable selon la présente invention est en outre remarquable en ce que ledit boîtier présente une partie arrière et une partie avant amovible configurées pour être sécables l'une de l'autre le long d'une zone d'amorce de rupture; et pour permettre, une fois la partie avant amovible séparée, à au moins une portion du tampon d'échantillon situé sur la bandelette de test, qui reste dans la partie arrière, de dépasser de cette partie arrière pour faciliter son imprégnation par l'échantillon de la boisson à tester. Un avantage du dispositif portable de l'invention est sa conception unique, qui intègre plusieurs zones de détection sur une seule bandelette de test. Cette caractéristique permet la détection simultanée de diverses substances psychoactives, incluant celles fréquemment utilisées dans les cas de soumission chimique, telles que la kétamine, le GHB, les opioïdes et les benzodiazépines, à partir d'un unique échantillon de boisson. Cette approche multi-analytes élimine le besoin de plusieurs tests séparés, optimisant l'efficacité et la rapidité de l'analyse. Un autre avantage du dispositif portable de l'invention est son design compact et sa partie avant amovible, qui facilitent son transport et permettent une utilisation discrète dans divers contextes sociaux. Grâce à cette portabilité, les utilisateurs peuvent tester leurs boissons de manière discrète, ce qui favorise l'emploi proactif du dispositif pour renforcer la sécurité personnelle. Encore un autre avantage du dispositif portable de l'invention est son architecture optimisée qui permet une imprégnation rapide du tampon d'échantillon et une détection efficace, offrant ainsi des résultats en temps réel ou quasi réel. Cette capacité de fournir des réponses immédiates est essentielle pour permettre aux utilisateurs d'agir sans délai en cas de détection de substances nocives, améliorant significativement la réactivité face à des situations potentiellement dangereuses. Un avantage supplémentaire du dispositif portable de l’invention est qu’il est peu coûteux à fabriquer et simple à utiliser, ce qui contribue directement à son accessibilité économique. En rendant le dispositif facile à utiliser et économiquement accessible, la présente invention démocratise la protection contre la soumission chimique. Par ailleurs, le caractère économique et la facilité d'usage encouragent une adoption plus large par le grand public, contribuant à une prévention plus efficace de la soumission chimique et à une sensibilisation accrue aux dangers des substances psychoactives dans les boissons. La présente invention apporte ainsi une contribution significative à la sécurité individuelle et à la santé publique en proposant un outil de détection polyvalent, discret, rapide, et accessible, répondant efficacement aux défis posés par la détection de substances psychoactives dans un contexte social D’autres caractéristiques avantageuses de l’invention sont listées ci-dessous. Chacune de ces caractéristiques peut être considérée seule ou en combinaison avec les caractéristiques remarquables définies ci-dessus, et faire l’objet, le cas échéant, d’une ou plusieurs demandes de brevet divisionnaires : La première zone de détection du dispositif portable de l’invention est avantageusement configurée pour catalyser la conversion d'un précurseur de la substance psychoactive du deuxième type en cette substance psychoactive de deuxième type, cette conversion permet à la substance psychoactive du deuxième type, une fois produite, d'être détectée par la deuxième zone de détection. De façon préférée, la substance psychoactive du deuxième type détectable dans la deuxième zone de détection est le gamma-hydroxybutyrate (GHB) ; le précurseur du GHB est sélectionné parmi le gamma-butyrolactone (GBL), l’acétate d'acide 4-hydroxybutyrique, et leurs combinaisons ; et la première zone de détection, suite à l'absorption de l'échantillon de la boisson, crée un milieu acide propice à la conversion dudit précurseur du GHB en GHB, ce qui permet ainsi à ce dernier d’être détecté dans la deuxième zone de détection. Préférentiellement, la substance psychoactive du premier type est une substance psychoactive ayant une ou plusieurs amines basiques. La première zone de détection comprend avantageusement une zone de réaction dans laquelle un réactif chimique dit-réactif de Mandelin est immobilisé, lequel réactif de Mandelin est conçu pour subir un changement de couleur visible à l’œil nu en présence d’un ou plusieurs composés chimiques contenant une ou plusieurs amines basiques. La première zone de détection comprend avantageusement une zone de réaction dans laquelle un indicateur coloré est immobilisé, à l’état sec , lequel indicateur coloré est un réactif de Madelin modifié composé de vanadate d’ammonium et d’acide sulfurique dilué avec de l’eau à une concentration de 75% à 88% en poids ; et lequel indicateur coloré subit un changement de couleur visible à l’œil nu en présence d'une ou plusieurs substances psychoactives contenant une ou plusieurs amines basiques. Préférentiellement, la première zone de détection est réalisée en fibre constituée de fibre de verre et/ou de fibre de polyester. Le ou les composés chimiques contenant une ou plusieurs amines basiques peuvent être sélectionnés dans le groupe constitué par la kétamine, la cocaïne, l'amphétamine, la méthamphétamine, la 3,4-méthylènedioxy-méthamphétamine (MDMA), la méthylènedioxyamphétamine (MDA), la 2,5-diméthoxy-4-éthoxyamphétamine (MEM), la morphine, la diéthyllysergamide (LSD) et La scopolamine. La substance psychoactive du deuxième type peut être le gamma-hydroxybutyrate (GHB). Avantageusement, la deuxième zone de détection comprend une zone de réaction dans laquelle un chimiosenseur chromo-fluorogène est immobilisé, lequel chimiosenseur chromo-fluorogène est conçu pour produire une réponse colorimétrique visible à l'œil nu et une réponse fluorimétrique en présence de GHB. Selon un mode de réalisation, Ledit chimiosenseur chromo-fluorogène est sélectionné parmi les dérivés de borodipyrométhène (BODIPY). Selon un mode de réalisation, ledit chimiosenseur chromo-fluorogène est un complexe métallique borodipyrométhène (BODIPY)-fer(III) ayant la formule chimique [Chem.1] suivante: [Chem.1] : Selon un mode de réalisation, ledit chimiosenseur chromo-fluorogène est un complexe métallique de Cu(II) ou 9 ayant la formule chimique [Chem.2] suivante : [Chem.2] Selon un mode de réalisation, la chambre interne du boîtier loge en outre une bandelette d’essai immuno-chromatographique à flux latéral, laquelle bandelette d’essai, disposée à côté et parallèlement à la bandelette de test, est configurée pour la détection d’une substance psychoactive de troisième type, désignée ci-après comme la substance psychotrope cible, potentiellement présente dans l’échantillon de boisson, et comprend, en communication fluidique et dans l'ordre suivant : - une zone de contact prévue pour être imprégnée d’un échantillon de la boisson à tester ; - une membrane de conjugaison où est immobilisé un conjugué d’anticorps mobile, lequel conjugué d’anticorps est composé d'un anticorps conçu pour se lier spécifiquement à la substance psychotrope cible et d'un marqueur ; - une membrane de détection de signal comprenant : -- une zone de capture ayant un agent de capture immobilisé, conçu pour se lier de manière sélective à l'anticorps contenu dans le conjugué d’anticorps, sans interagir avec la substance psychotrope cible ; -- une zone de contrôle ayant un anticorps de contrôle immobilisé, ledit anticorps de contrôle étant apte à se lier spécifiquement à l'anticorps contenu dans le conjugué d’anticorps. Avantageusement, la séparation de la partie avant amovible du boîtier permet également à au moins une partie de la zone de contact située sur ladite bandelette d’essai, qui reste dans la partie arrière, de dépasser de cette partie arrière pour faciliter son imprégnation par l'échantillon de la boisson à tester. La substance psychotrope cible, pouvant être détectée dans l'échantillon de boisson, peut être choisie parmi les substances psychotropes appartenant aux catégories des benzodiazépines, des opioïdes et des stimulants. De façon préférée, l’anticorps contenu dans le conjugué d’anticorps est un anticorps monoclonal de souris. Le marqueur du conjugué d’anticorps peut être constitué de nanoparticules d’or colloïdal. De manière préférée, l’agent de capture immobilisé dans la zone de capture comprend la substance psychotrope ciblée elle-même ou un analogue approprié de celle-ci, et un agent de liaison choisi parmi l'albumine de sérum bovin (BSA) et l'albumine de sérum humain (HSA). L’agent de contrôle immobilisé dans la zone de contrôle peut comprendre un anticorps conçu pour se lier de manière spécifique à l'anticorps présent dans le conjugué d'anticorps. Préférentiellement, l’anticorps contenu dans le conjugué d’anticorps est un anticorps monoclonal de souris ; le marqueur du conjugué d’anticorps est constitué de nanoparticules d’or colloïdal ; et l’agent de contrôle immobilisé dans la zone de contrôle comprend un anticorps IgG de chèvre ou de lapin anti-souris. La substance psychotrope ciblée appartenant à la catégorie des benzodiazépines peut être sélectionnée parmi l'adinazolam, l'alprazolam, le bentazépam, le bretazenil, le bromazépam, le brotizolam, le camézépam, le chlordiazépoxide, le cinazépam, le cinolazépam, le clobazam, le clonazépam, le clorazépate, le clotiazépam, le diazépam, le flunitrazépam, le lorazépam, le lormétazépam, le médozépam, le midazolam, le nitrazépam, l'oxazépam, le temazépam, le tiéprazolam et leurs combinaisons. La substance psychotrope ciblée peut être la morphine. La substance psychotrope ciblée peut être le fentanyl. La substance psychotrope ciblée peut être l’amphétamine et/ou la méthamphétamine. Un autre aspect de l’invention concerne l'utilisation du dispositif portable objet de l’invention pour la détection simultanée de substances psychoactives dans un échantillon de boisson. Brève description des figures. D’autres avantages et caractéristiques de l’invention apparaîtront mieux à la lecture de la description d’un mode de réalisation préféré qui va suivre, en référence aux dessins annexés, réalisés à titre d’exemples indicatifs et non limitatifs et sur lesquels : FIG. 1 est une vue en perspective d’un dispositif portable conforme à l’invention comportant un boîtier présentant une partie arrière et une partie avant amovible configurées pour être sécables l'une de l'autre le long d'une zone d'amorce de rupture. FIG. 2 est une vue de profile du boîtier représenté à FIG. 1 . FIG. 3 est une vue de dessus du boîtier représenté à FIG. 1 , comprenant selon un premier mode de réalisation, une bandelette de test, laquelle est placée dans la partie inférieure du boîtier. La partie supérieure du boîtier n’est pas représentée pour des raisons de visibilité et de clarté du dessin. FIG. 4 est une vue éclatée de la bandelette de test représentée à FIG. 3 , FIG. 5 est une vue de profile du boîtier représenté à FIG. 3 , sans la partie avant amovible et sécable. FIG. 6 est une vue de dessus du boîtier représenté à FIG. 3 , sans la partie avant amovible et sécable. La partie supérieure du boîtier correspondant à la partie arrière logeant la bandelette de test, n’est pas représentée pour des raisons de visibilité et de clarté du dessin. FIG. 7 est une vue de dessus du boîtier représenté à FIG. 1 , comprenant, selon un deuxième mode de réalisation, une bandelette de test et une bandelette d’essai, lesquelles bandelette sont placées dans la partie inférieure du boîtier. La partie supérieure du boîtier n’est pas représentée pour des raisons de visibilité et de clarté du dessin. FIG. 8 ] est une vue de profile du boîtier représenté à FIG. 7 , sans la partie avant amovible et sécable. FIG. 9 est une vue de dessus du boîtier représenté à FIG. 7 , sans la partie avant amovible et sécable. La partie supérieure du boîtier correspondant à la partie arrière logeant la bandelette de test et la bandelette d’essai, n’est pas représentée pour des raisons de visibilité et de clarté du dessin. Description des modes de réalisation. La présente description est donnée à titre non limitatif, chaque caractéristique exposée seulement dans un mode de réalisation pouvant être généralisée aux autres modes de réalisation. De même, une ou plusieurs caractéristiques exposées seulement dans un mode de réalisation peuvent être combinées avec une ou plusieurs autres caractéristiques exposées seulement dans un autre mode de réalisation. On note dès à présent que les figures 1 à 9 sont très simplifiées, les éléments qui y sont représentés ne sont donc pas nécessairement à l'échelle les uns par rapport à l'autre ou d'une figure à l'autre. On notera par ailleurs que, d'une figure à l'autre, des éléments ou parties identiques ou similaires sont désignés dans la mesure du possible par les mêmes signes de référence. Avant d'aller plus avant dans la description de l'invention, les définitions ci-dessous sont données afin de faciliter l'exposé de l'invention Le terme « au moins un » ou « au moins une… », référence à un ou plusieurs, de préférence un ou deux. Les expressions « compris entre ... et... » et « allant de ... à ... » doivent se comprendre bornes incluses, sauf si le contraire est spécifié. Le terme « et/ou » inclut toutes les combinaisons d'un ou plusieurs des éléments répertoriés associés. L'utilisation de « peut » lors de la description des modes de réalisation de la présente invention fait référence à « un ou plusieurs modes de réalisation de la présente invention ». Les termes « amont » et « aval » se réfèrent à la direction de migration dans le test, cette migration s'effectuant depuis le tampon d'échantillon (à l'extrémité fonctionnelle amont de la bandelette de test ou d’essai), vers les zones de détection, et se terminant dans la membrane ou tampon absorbant (à l'extrémité fonctionnelle aval de la bandelette de test ou d’essai), lorsque ce dernier est présent (ce qui est préféré). . Par exemple, dans le cas de la bandelette de test, la première zone de détection est positionnée en amont de la deuxième zone de détection, mais en aval du tampon d'échantillonnage. Et dans le cas de la bandelette dite-bandelette d’essai, la zone de capture est positionnée en amont de la zone de contrôle; mais en aval de la zone de contact ou d'échantillonnage. Les termes « proximal » et « distal » correspondent respectivement à l'extrémité de la bandelette d'essai le plus proche de l'utilisateur lors de l'utilisation ou de l'insertion dans le dispositif de test, et à l'extrémité de la bandelette d'essai la plus éloignée de l'utilisateur, souvent celle qui est immergée en premier dans l'échantillon à tester ou qui entre en contact avec l'échantillon Le terme « communication fluide » entre deux éléments signifie, conformément à l'usage habituel, que ces deux éléments sont en contact physique de manière à faciliter la migration d'un liquide de l'un vers l'autre. Préférentiellement, ce contact est établi par un chevauchement de l'un des éléments sur l'autre. Ce chevauchement implique qu’un élément recouvre partiellement l’autre élément, typiquement de 2 mm à 8 mm à leurs extrémités respectives. Toutefois, il est également envisageable d'établir un contact physique direct où les deux éléments sont reliés directement l'un à l'autre, sans aucun chevauchement. Le terme « collage » fait référence à la méthode de jonction ou d'assemblage de deux surfaces ou objets à l'aide d'un adhésif pour former une union fixe ou semi-permanente. Cette technique implique l'application d'une substance collante, telle qu'une colle, un adhésif sensible à la pression, une résine thermofusible, ou une colle UV, qui, en durcissant, crée une liaison mécanique ou chimique entre les surfaces en contact. Dans le contexte de la présente invention, les adhésifs insolubles (ou résistants à) l’eau sont préférés. Le terme « anticorps » est utilisé dans le sens le plus large et couvre spécifiquement les anticorps monoclonaux, les anticorps polyclonaux, ainsi que les fragments d'anticorps, qui sont capables de reconnaître et de se lier spécifiquement ou sélectivement aux substances psychoactives potentiellement présentes dans les échantillons de boisson à tester. Un anticorps intact possède principalement deux régions : une région variable et une région constante. La région variable reconnaît et se lie à une substance psychoactive cible. Un anticorps peut être de n’importe quel type (par exemple IgG, IgE, IgM, IgD et IgA), classe (par exemple IgG1, IgG2, IgG3, IgG4, IgA1 et IgA2) ou sous-classe. L'anticorps peut provenir de n'importe quelle espèce appropriée. Dans certains modes de réalisation, l'anticorps est d'origine animale, notamment murine, lagomorphe, caprine, ou ovine. Un « anticorps monoclonal » fait référence à un anticorps obtenu à partir d'une population d'anticorps sensiblement homogènes, c'est-à-dire que les anticorps individuels comprenant la population sont identiques à l'exception d'éventuelles mutations naturelles qui peuvent être présentes en quantités mineures. Les anticorps monoclonaux sont hautement spécifiques, car ils ciblent une seule partie de la substance psychoactive cible. Un « anticorps polyclonal » fait référence à une préparation d’anticorps dirigés contre un seul site antigénique, mais avec des spécificités et des affinités de liaison différentes. Un « fragment d'anticorps » comprend une partie d'un anticorps, notamment une portion de sa région variable, qui conserve la capacité de se lier à la substance psychoactive cible. Des exemples de fragments d'anticorps comprennent, sans s'y limiter, les fragments Fab, Fab', F(ab')2 et Fv. Le terme « se lier spécifiquement » ou « se lier de manière spécifique » fait référence à une molécule (par exemple, un réactif de liaison tel qu'un anticorps ou un fragment d'anticorps) qui se lie à une cible avec une affinité au moins 2 fois supérieure à celle des composés non cibles, par exemple au moins 4 fois. 5 fois, 6 fois, 7 fois, 8 fois, 9 fois, 10 fois, 20 fois, 25 fois, 50 fois, 100 fois ou 1 000 fois ou plus. La présente invention a donc tout d’abord comme objet un dispositif portable (représenté par la référence 10 sur les figures 1 et 2) qui est conçu pour une détection simultanée de substances psychoactives dans des échantillons de boissons. Utilisant des bandelettes de test spécifiques, ce dispositif portable offre une réponse immédiate aux préoccupations de sécurité individuelle, détectant avec fiabilité les composés illicites. Par sa portabilité, efficacité et discrétion, ce dispositif devient essentiel pour prévenir la falsification de boissons et combattre les risques de soumission chimique, assurant la protection dans divers environnements, tout en garantissant la sécurité des consommateurs de manière efficace et discrète. Le terme « boisson » ou « boissons » fait référence à tout liquide destiné à être ingéré par des êtres humains, englobant une vaste gamme incluant les boissons alcooliques - telles que le vin, la bière, le cidre, les spiritueux et les liqueurs-, ainsi que les boissons non-alcooliques, incluant l'eau, soit de robinet ou minérale, les jus de fruits, les boissons carbonatées, les eaux aromatisées, les frappés, les smoothies et les préparations pharmaceutiques buvables. En référence aux figures 1 et 2, le dispositif portable 10 comprend un boîtier 100 qui est destiné à accueillir et à sécuriser une ou plusieurs bandelettes de test tout en assurant une protection efficace, notamment contre l'humidité. Ce boîtier 100 comprend une chambre interne (non représentée) dans laquelle est logée au moins une bandelette de test 140, laquelle est représentée sur les figures 3 à 6. La chambre interne du boîtier 100 est de préférence étanche, c’est-à-dire qu'elle est close de manière à empêcher ou limiter les échanges de fluide avec le milieu extérieur à la chambre interne. Sur les figures 1 et 2, le boîtier 100 comprend une partie arrière 101 et une partie avant amovible 102 sécable de la partie arrière 101 le long d'une zone d'amorce de rupture 105. Concrètement, la partie avant amovible 102 du boîtier 100 se trouve au niveau d'un tampon d’échantillon 141 de la bandelette de test 140, de sorte qu’après rupture de la partie avant amovible 102 de la partie principale 101 du boîtier 100, au moins une partie dudit tampon de contact 141 dépasse de la chambre interne du boîtier pour permettre son imprégnation par l'échantillon de la boisson à tester. La zone d'amorce de rupture 105 peut être réalisée selon différentes techniques visant à faciliter et à rendre plus pratique l'ouverture du boîtier 100 tout en maintenant son étanchéité. A titre d’exemples non-limitatifs, on peut citer : - Les lignes de faiblesse ou rainures pré-définies, lesquelles peuvent être prédéfinies sur le boîtier et adopter des formes droites, courbes ou sinueuses. Elles sont typiquement réalisées par des techniques telles que le moulage, la découpe laser, ou tout autre procédé de fabrication approprié. - Les perforations contrôlées, qui peuvent adopter des formes rondes, carrées, ovales ou autres, et sont intégrées dans la partie arrière du boîtier. Lorsque la partie avant est détachée, elle se sépare facilement le long de ces perforations. Le boîtier 100 peut être conçu selon diverses configurations structurelles pour accueillir et sécuriser une ou plusieurs bandelettes de test, assurant une protection efficace contre l'humidité (ce qui est préférable). Typiquement, comme l’illustrent les figures 1 et 2, le boîtier 100 se compose de deux éléments principaux : une partie inférieure 120 prévue pour recevoir une ou plusieurs bandelettes de test, et une partie supérieure 110 qui s’ajuste ou s’emboite à la partie inférieure 120 complétant ainsi le boîtier 100 incluant la ou les bandelettes de test. Il est envisageable que les parties supérieure et inférieure soient identiques, par exemple par exemple, réalisées comme des demi-coques supérieure et inférieure interchangeables, Cette approche unifiée de la conception réduit significativement la complexité de la production et du processus d'assemblage, par exemple, en diminuant le nombre de composants distincts nécessaires et en permettant l'utilisation des mêmes moules et outillages pour fabriquer les deux éléments. Ce système contribue non seulement à simplifier la fabrication, mais contribue également à assurer une protection homogène et efficace contre l'humidité. Dans un mode de réalisation, chacune des parties supérieure et inférieure, 110 et 120, comporte des moyens de guidage et/ou d'assemblage correspondants, tels que des ergots ou des encoches, visant à faciliter leur assemblage. À titre d'exemples, mais sans s'y limiter, on peut citer : des ergots ou des encoches intégrés aux parties inférieure et supérieure, permettant un verrouillage par simple pression pour assembler le boîtier ; ou des aimants intégrés aux parties inférieure et supérieure permettant un assemblage rapide et facile grâce à l'attraction magnétique. Il est important de noter que tant la partie supérieure que la partie inférieure intègrent une zone d'amorce de rupture 105, élément crucial pour la facilité d'accès aux bandelettes de test tout en préservant leur intégrité. Par ailleurs, lors de la conception et de l'assemblage du boîtier 100, une attention particulière est accordée à la zone d'amorce de rupture 105 pour assurer que l’assemblage des deux parties, supérieure 110 et inférieure 120, ne compromette pas cette zone essentielle. Le boîtier 100 comprenant des parties supérieure et inférieure, 110 et 120, ainsi qu'une partie avant 102 amovible et sécable, peut être confectionné en matière plastique, par exemple, via des techniques de moulage ou d'impression 3D. Pour une application pratique de l'invention, le boîtier 100 est fabriqué à partir d'une matière plastique transparente. Cette conception permet à l'utilisateur d'observer directement les bandelettes de test ou d'essai ainsi que les résultats obtenus, sans nécessiter l'ouverture complète du boîtier ou le retrait des bandelettes de leur logement. Dans une configuration alternative, seule la partie supérieure 110 est conçue avec un matériau transparent, facilitant ainsi la lecture des résultats de test. En outre, une variante envisageable intègre dans la partie supérieure 110 une fenêtre d’observation spécifique, transparente, judicieusement positionnée pour coïncider avec les zones de détection des bandelettes de test, améliorant la facilité et la précision de la visualisation des résultats du test. Des exemples de matières plastiques transparentes incluent notamment le polycarbonate (PC) ; le polyéthylène téréphtalate (PET) ; le polyméthacrylate de méthyle (PMMA) ; souvent commercialisé sous le nom de Plexiglas ; le polypropylène transparent (PP) et le polystyrène transparent (PS). Dans un souci de clarté et de concision dans la description de l’invention, il est à noter que la partie supérieure 110 du boîtier 100 n'est pas représentée sur les figures 3, 6, 7 et 9 annexées, sans que cela puisse être considéré comme une limitation de la protection recherchée. Par conséquent, les détails et explications fournies dans la suite de la description se concentrent exclusivement sur la partie inférieure 120, laquelle inclut la ou les bandelettes de test 140. Ceci permet de simplifier la visualisation et la compréhension des caractéristiques essentielles du boîtier, en mettant l'accent sur les aspects les plus critiques de son fonctionnement et de son utilisation. Sur les figures 3 à 9 sont illustrés deux modes de réalisation d'un dispositif portable de test selon l'invention. Un premier mode de réalisation est illustré sur les figures 3 à 6, et un deuxième mode de réalisation est illustré sur les figures 7 à 9. Premier mode de réalisation du dispositif de détection selon l’invention : Le premier mode de réalisation de l'invention concerne un dispositif de détection muni d'une bandelette de test 140 spécifiquement configurée pour la détection simultanée de deux types distincts de substances psychoactives dans un même échantillon de boisson. Ce premier mode de réalisation permet donc d'identifier à la fois une substance psychoactive de type I et une substance psychoactive de type II, au sein d'un seul et même test Concernant la substance psychoactive de type I, il s'agit préférentiellement d'un composé chimique comprenant une ou plusieurs amines basiques. La gamme de composés chimiques détectables pour cette catégorie inclut, sans s'y limiter, la kétamine, la cocaïne, l'amphétamine, la méthamphétamine, la 3,4-méthylènedioxy-méthamphétamine (MDMA), la méthylènedioxyamphétamine (MDA), la 2,5-diméthoxy-4-éthoxyamphétamine (MEM), la morphine, la diéthyllysergamide (LSD) et La scopolamine, offrant ainsi une couverture étendue des substances communément rencontrées dans des contextes de falsifications de boissons. Par ailleurs, la substance de type II ciblée par ce dispositif est spécifiquement le gamma-hydroxybutyrate (GHB), un agent sédatif fréquemment impliqué dans des incidents de soumission chimique. L'intégration de cette détection offre une réponse directe et efficace aux besoins de sécurité publique, permettant une identification rapide et fiable de substances potentiellement dangereuses dans des boissons. Cette dualité de détection offre un outil polyvalent et efficace pour l'identification rapide de substances psychoactives dans les boissons, contribuant ainsi à la prévention des risques associés à la consommation de substances illicites dans des contextes sociaux ou autres. La FIG. 3 illustre la disposition de la bandelette de test 140 dans la partie inférieure 120 du boîtier 100. Comme le démontrent les figures 3, 5 à 7, la bandelette de test 140 est composée, dans l'ordre suivant, en communication fluidique : un tampon d'échantillon 141, une première zone de détection 142, une deuxième zone de détection 143, et éventuellement, un tampon absorbant 144. De plus, cette bandelette de test 140 est soutenue par une carte de support 130, lorsque celle-ci est présente (ce qui est préférable). Afin de mieux appréhender la mise en œuvre de la bandelette de test 140 dans le cadre de la présente invention, la carte de support 130 ainsi que les composants constituant la bandelette de test 140 seront maintenant décrits plus en détail. La carte de support : Sur les figures 2, 3 et 5 à 7, la bandelette de test 140 est soutenue par une carte de support 130. La carte de support 130 présente une extrémité distale 131 et une extrémité proximale 132. Sa longueur est généralement inférieure à la distance entre l’extrémité arrière 102 du boîtier 100 et la ligne de rupture 105 de celui-ci, et sa largeur peut être égale ou supérieure à celle de la ou des bandelettes qu’elle supporte. La carte de support 130, équipée de la bandelette de test 140, peut être solidarisée au fond de la partie inférieure 120 du boîtier grâce à divers moyens de fixation reconnus, tels que le collage, l'adhésion magnétique, le clipsage, ou toute autre méthode de fixation analogue. Le fond de cette partie inférieure 120 peut être conçu plat ou agrémenté de protubérances faisant saillie depuis sa base, dans ce cas, la carte de support 130 se fixerait sur ces protubérances. Néanmoins, il est également possible d'attacher la bandelette de test 140 directement à la surface du fond de la partie inférieure 120 ou sur ces protubérances, par exemple, par collage. La carte de support 130 est généralement constituée d'un matériau insoluble dans l'eau, non poreux et rigide ou semi-rigide, c’est-à-dire qui tient en forme par lui-même. Elle peut être réalisée de divers matériaux organiques ou inorganiques, naturels et/ou synthétiques. Des exemples représentatifs de ces divers matériaux comprennent, sans s'y limiter, le verre, le métal, céramique et le plastique tel que polyéthylène, polyester, polypropylène, polystyrène, polyméthacrylate, poly(téréphtalate d'éthylène), poly(butyrate de vinyle), polycarbonate et similaires. La partie inférieure 120 du boîtier 100 peut comprendre une ou plusieurs butées configurées pour maintenir la carte de support 130 en position stable à l'intérieur du boîtier 100 et pour prévenir tout déplacement ou toute sortie accidentelle de la carte support 130 hors du boîtier, notamment lors de l'échantillonnage de la boisson. Le tampon d’échantillon : Le tampon d’échantillon 141 est positionné à une extrémité amont de la bandelette de test 140. Il a pour fonction de recevoir l'échantillon de boisson susceptible de contenir des substances psychoactives et de le diffuser, par capillarité, vers les zones de réaction de la bandelette de test. Il peut recevoir l'échantillon de boisson soit par son immersion dans la boisson à tester, soit par le dépôt direct de l'échantillon de boisson, par exemple en versant ou déposant une ou quelques gouttes sur le tampon de contact 141, par tout moyen connu, par exemple au moyen d’une pipette, d’une cuillère, d'un stylet ou du doigt de l’utilisateur. Il peut être constitué de n'importe quel matériau absorbant, de préférence compatible avec le contact alimentaire, tel que la fibre de polyester ou la fibre de verre. Sa longueur peut varier de 10 mm à 30 mm, par exemple de 15 mm à 20 mm. Sa largeur peut varier de 2 mm à 10 mm, par exemple de 3 mm à 7 mm. En pratique, le tampon d’échantillon 141 a sensiblement la même largeur que les autres composants de la bandelette de test 140. Première zone de détection : La première zone de détection 142 est spécifiquement conçue pour détecter la présence de substances psychoactives d'un premier type dans la boisson. De façon générale, ces substances psychoactives d'un premier type sont des substances psychoactives se caractérisant par la présence d'une ou plusieurs amines basiques. Au sens de la présente invention, on entend désigner par le terme « amine basique » une amine aliphatique primaire, secondaire ou tertiaire. Des exemples représentatifs de substances psychoactives contenant une ou plusieurs amines basiques, comprennent, mais sans s'y limiter, la kétamine, la cocaïne, l'amphétamine, la méthamphétamine, la 3,4-méthylènedioxy-méthamphétamine (MDMA), la méthylènedioxyamphétamine (MDA), la 2,5-diméthoxy-4-éthoxyamphétamine (MEM), la morphine, la diéthyllysergamide (LSD) et La scopolamine, et d'autres substances psychoactives ayant au moins une amine basique. En se référant aux figures 4 et 6, la première zone de détection 142 est positionnée adjacente au tampon d’échantillon 141 et en communication fluide avec celui-ci. L’extrémité proximale de tampon d’échantillon 141 se superpose avantageusement à l’extrémité distale de la première zone de détection 142. En pratique, la première zone de détection 142 est adaptée pour recevoir au moins une partie de l’échantillon de boisson absorbé par le tampon d’échantillon 241. La première zone de détection 142 a une longueur, dans le sens du flux de l’échantillon de boisson par capillarité, pouvant varier de 5 mm à 15 mm, par exemple de 6 mm à 10 mm, et une largeur pouvant varier de de 2 mm à 10 mm, par exemple de 3 mm à 7 mm. En pratique, la première zone de détection 142 a sensiblement la même largeur que les autres composants de la bandelette de test 140. De manière avantageuse, la première zone de détection 142 inclut au moins une sous-zone de réaction 142a où un indicateur coloré, qui subit un changement de couleur visible à l’œil nu en présence de substances psychoactives contenant une ou plusieurs amines basiques, est immobilisé. Au sens de la présente invention, le terme « immobilisé » utilisé en lien avec le réactif indicateur, signifie que ce celui-ci est fixé dans l’au moins une sous-zone réactive 142a d'une manière telle qu'il ne peut pas facilement se détacher ou être retiré de cette sous-zone réactive 142a. Cela peut être réalisé en incorporant le réactif indicateur dans l’au moins une sous-zone réactive 142a et en le maintenant dans un état sec avant utilisation, sans nécessairement impliquer une liaison chimique. En d'autres termes, le réactif indicateur est retenu de manière stable dans l’au moins une sous-zone réactive 142a avant l'analyse. Avantageusement, l’indicateur coloré immobilisé dans l’au moins une sous-zone de réaction 142a est un réactif dit-réactif de Mandelin modifié. Le réactif de Mandelin, composé de métavanadate d'ammonium (NH 4 VO 3 ) et d'acide sulfurique (H 2 SO 4 ), est un réactif largement utilisé dans le domaine de la toxicologie pour la détection de substances psychoactives ayant au moins une amine basique telles que la kétamine, le para-méthoxyamphétamine (PMA), et des alcaloïdes. Il se présente généralement sous d’un liquide de couleur jaune à orange claire. C’est un réactif très sensible aux réducteurs, comme les amines basiques, qui transforment le métavanadate (V(+5)) en sous-oxydes de vanadium colorés en bleu ou en vert. D’autres couleurs peuvent être obtenues en fonction des produits formés à partir des substances psychoactives testées, par exemple, typiquement, une couleur orange rougeâtre foncé est produite avec la kétamine ; une couleur verte avec l’amphétamine ou la méthamphétamine ; une couleur violet foncé avec le MDMA (Ecstasy) une couleur bleu foncé avec la méthadone, couleur brun/orange avec le Rohypnol. Il est établi que le réactif de Mandelin est habituellement préparé par la dissolution de 1,0 g de vanadate d’ammonium dans 100 mL d’acide sulfurique concentré (98% en poids). Toutefois, cette concentration élevée d’acide sulfurique pose un problème majeur en raison de sa nature extrêmement agressive, ce qui peut endommager les membranes classiques des bandelettes de test et compromettre leur intégrité et fonctionnalité. Dans ce contexte, il est du mérite de la Demanderesse d'avoir identifié une solution à ce problème majeur en ajustant la concentration de l’acide sulfurique à une concentration comprise entre 75 à 88%, de préférence entre 83 à 85%, en poids, par dilution avec de l’eau. En effet, la Demanderesse a pu démontrer que cet ajustement de concentration offre les meilleures performances, notamment en termes de préservation de l'intégrité du matériau de la membrane et de stabilité chimique de l’indicateur coloré, dit-réactif de Mandelin modifié. L'homme du métier sait comment diluer l’acide sulfurique concentré à 98% avec de l'eau, de préférence de l'eau distillée et/ou désionisée, pour obtenir une concentration ajustée à un intervalle de 75 à 88 % en poids, avec une préférence pour un intervalle de 83 à 85 % en poids, dans de l'eau. Le terme « réactif de Madelin modifié » fait référence à un mélange de vanadate d’ammonium et d’acide sulfurique dilué avec de l’eau à une concentration de 75% à 88% en poids. Selon un mode de réalisation, le réactif de Mandelin est préparé par la dissolution de 1,0 g de vanadate d’ammonium dans 100 mL d’acide sulfurique concentré à 85% en poids (dilué avec de l’eau). La première zone de détection 142 peut être constituée de fibre de verre et/ou de fibre de polyester, telles que les membranes en fibres de verre et/ou de polyester commercialisées par la société Ahlstrom sous le nom de marque ReliaFlow®, par exemple, ReliaFlow® 6614. L’immobilisation du réactif de Mandelin dans ladite zone de réaction 142a peut être réalisée selon diverses méthodes connues, telles que l'imprégnation ou la pulvérisation du réactif de Mandelin ou d'une solution le contenant, suivie d'une étape de séchage, par exemple sous vide ou à l’air libre, à une température typiquement comprise entre 20° et 40°C, pour assurer son immobilisation complète. Préférentiellement, l’immobilisation du réactif de Mandelin dans la zone de réaction 142a est réalisée dans une atmosphère à humidité contrôlée ; de préférence inférieure à 50% d'humidité relative, préférentiellement inférieure à 30% d'humidité relative. Le contrôle de l’humidité lors de l'immobilisation du réactif de Mandelin modifié permet de préserver son intégrité chimique, évitant ainsi sa décomposition prématurée due à un excès d'humidité. Il permet également de maintenir ses propriétés optimales pour la détection des substances psychoactives ciblées. La zone de réaction 142a comportant le réactif de Mandelin peut être de toute forme géométrique plane (rectangulaire, carré, en triangle, circulaire, ovale, etc.). Sa surface peut varier de 2 mm 2 à 40 mm 2 . Dans un mode de réalisation particulier, la zone de réaction 142a a une longueur dans le sens du flux de l’échantillon de boisson, de 2 mm à 4 mm, et une largeur sensiblement égale à la largeur de la premièe zone de détection 142. Deuxième zone de détection : La deuxième zone de détection 143 est conçue pour identifier la présence de l’acide γ-hydroxybutyrique (GHB) dans la boisson. En se référant une fois de plus aux figures 3 et 6, la deuxième zone de détection 143 est positionnée adjacente à la première zone de détection 142 et en communication fluide avec celle-ci. L’extrémité distale de la première zone de détection 142 se superpose avantageusement à l’extrémité proximale de la deuxième zone de détection 143. En pratique, la deuxième zone de détection 143 est adaptée pour recevoir au moins une partie de l’échantillon de boisson ayant migré à travers le tampon d’échantillon 141 et la deuxième zone de détection 142. Elle peut être fabriquée à partir d'une variété de matériaux à travers lesquels l’échantillon de boisson peut migrer. Par exemple, les matériaux utilisés pour former la deuxième zone de détection 143 peuvent inclure, mais sans s’y limiter, des matériaux naturels, synthétiques, ou naturels mais modifiés synthétiquement, tels que les polysaccharides (par exemple, des matériaux cellulosiques tels que le papier et les dérivés de la cellulose, comme l'acétate de cellulose et la nitrocellulose); le sulfone de polyéther; le polyéthylène; le nylon; le fluorure de polyvinylidène (PVDF); le polyester ou le polypropylène. Dans un mode de réalisation particulier, la première zone de détection 143 est réalisée en nitrocellulose. La deuxième zone de détection 143 a une longueur, dans le sens de l’écoulement de l’échantillon de boisson, pouvant varier de 5 mm à 20 mm, par exemple de 10 mm à 15 mm, et une largeur pouvant varier de 2 mm à 10 mm, par exemple de 3 mm à 7 mm. En pratique, la première zone de détection 143 a sensiblement la même largeur que les autres composants de la bandelette de détection 140. La deuxième zone de détection 143 comprend au moins une sous-zone réactive 143a dans laquelle un chimiosenseur est immobilisé. Ce chimiosenseur est spécifiquement choisi pour sa capacité à produire une réponse colorimétrique visible à l'œil nu et une réponse fluorimétrique en présence de GHB, permettant ainsi une détection visuelle directe et rapide de cette substance. Au sens de la présente invention, le terme "immobilisé" en lien avec le chimiosenseur signifie que celui-ci est fixé dans l’au moins une sous-zone réactive 143a d'une manière telle qu'il ne peut pas facilement se détacher ou être retiré de cette sous-zone réactive 143a. Cela peut être réalisé en incorporant le chimiosenseur dans l’au moins une sous-zone réactive 143a et en le maintenant dans un état sec avant utilisation, sans nécessairement impliquer une liaison chimique. En d'autres termes, le chimiosenseur est retenu de manière stable dans l’au moins une sous-zone réactive 143a avant l'analyse. Le chimiosenseur mis en œuvre dans le cadre de la présente invention est avantageusement choisi parmi les complexes métalliques suivants : - un complexe métallique borodipyrométhène (BODIPY)-fer(III) ayant la formule chimique [Chem.1] ci-dessous ; et: - un complexe métallique de Cu(II) avec un ligand tétradenté et un colorant fluorescent coumarine, ledit complexe métallique de Cu(II) ayant la formule chimique [Chem.2] ci-dessous. [Chem.1] : [Chem.2]. : Le complexe métallique borodipyrométhène (BODIPY)-fer(III) de formule chimique [Chem.1], sa synthèse et son utilisation pour la détection du GHB sont décrits dans l’article de : Junghyun Ryu, et al. Overcoming interferences in the colorimetric and fluorimetric detection of γ-hydroxybutyrate in spiked beverages, Sensors and Actuators B: Chemical, 2022, Volume 364, 131861. Le complexe métallique de Cu(II) de la formule chimique [Chem.2], et son utilisation pour la détection du GHB sont décrits dans l’article de : Eva Garrido, et al., “Strip-based lateral flow-type indicator displacement assay for γ-hydroxybutyric acid (GHB) detection in beverages”, Sensors and Actuators B: Chemical, Volume 377, 2023, 133043. Sa synthèse est décrite dans l’article de : Piersandro Pallavicini, et al., “On-off-on' fluorescent indicators of pH windows based on three separated components”, Chem. Commun. (2002), pp. 2452-2453. . Le chimiosenseur préféré selon la présente invention est le complexe métallique borodipyrométhène (BODIPY)-fer(III) en raison notamment de son coût de synthèse faible, de sa bonne stabilité chimique, et de sa facilité de dépôt et d'imprégnation sur ou dans la bandelette de test. L’immobilisation du chimiosenseur sur ou dans ladite zone réactive 143a peut être réalisée selon diverses méthodes connues, telles que l'imprégnation ou la pulvérisation d'une solution contenant ledit chimiosenseur, suivie d'une étape de séchage, par exemple sous vide ou sous flux d’air à la température ambiante (25° ± 5°C) pour assurer son immobilisation complète. La zone réactive 143a comportant le chimiosenseur peut être de toute forme géométrique plane (rectangulaire, carré, en triangle, circulaire, ovale, etc.). Sa surface peut varier de 2 mm 2 à 40 mm 2 . Dans un mode de réalisation particulier, la zone de réaction 143a a une longueur dans le sens du flux de l’échantillon de boisson, de 2 mm à 4 mm, et une largeur sensiblement égale à la largeur de deuxième zone de détection 143. Tampon absorbant : Comme illustré sur les figures 3 et 6, une bandelette de test 140 intègre un tampon absorbant 144 positionné à l’extrémité opposée au tampon d’échantillon 141 et est en communication fluide avec la deuxième zone de détection 143. L’extrémité distale du tampon absorbant 144 se superpose avantageusement à l’extrémité proximale de la deuxième zone de détection 143. Le tampon absorbant 144 reçoit typiquement l’échantillon de boisson ayant migré par capillarité à travers le tampon d’échantillon 141 ainsi que les zones de détection 142 et 143. En agissant tel une pompe capillaire, le tampon absorbant 144 contribue à faciliter le phénomène de capillarité et l'écoulement de l’échantillon de boisson au sein de la bandelette de test. Il est à noter que la présence d'un tampon absorbant n'est pas strictement indispensable. Son utilité peut être contournée, par exemple, en allongeant la longueur de la deuxième zone de détection 143 au-delà de la ou des zones de réactions 143a, assurant ainsi un transport efficace et continu de l'échantillon de boisson à travers toutes les zones nécessaires pour une détection précise, sans nécessiter un tampon absorbant additionnel pour maintenir ou augmenter le flux de l'échantillon. Le tampon absorbant 144 peut être fabriqué à partir d'une variété de matériaux absorbants convenant à cet usage, incluant, mais sans s'y limiter, la fibre de coton, la fibre de cellulose, ainsi que d'autres matériaux absorbants comparables. Sa longueur et sa largeur, peuvent varier respectivement de 3 mm à 10 mm, par exemple de 4 à 8 mm ; et de 2 mm à 10 mm, par exemple de 3 mm à 7 mm. En pratique, le tampon absorbant a sensiblement la même largeur que les autres composants de la bandelette de test 140. Assemblage et utilisation de la bandelette de test : La bandelette de test 140 peut être assemblée par des procédés bien connus de l'homme du métier, du type comprenant : - une étape de fixation de la deuxième zone de détection 143 sur la carte de support 130, par exemple par collage ; - une étape de fixation de la première zone de détection 142 sur la carte de support 130, par exemple par collage, avec un chevauchement sur la deuxième zone de détection 143 ; - une étape de fixation du tampon d’échantillon 141 sur la carte de support 130, par exemple par collage, avec un chevauchement sur la première zone de détection 141 ; - une étape de fixation du tampon absorbant 144 sur la carte de support 130, par exemple par collage, avec un chevauchement sur la deuxième zone de détection 143. Dans une réalisation pratique, comme illustré sur les figures 3, 4 et 6, le tampon d’échantillon 141 est fixé sur la carte de support 130 de manière à ce que son extrémité libre dépasse au-delà de l'extrémité distale 131 de la carte de support. Cette disposition permet à l'extrémité libre du tampon d’échantillon 141 d'être immergée dans la boisson à tester, facilitant ainsi l'absorption de l'échantillon de boisson à des fins de détection. Dans une configuration pratique, comme le montrent les figures 3, 4 et 6, et tenant compte du fait qu'une fois la partie avant amovible 103 retirée, au moins une section du tampon d'échantillon 141 située sur la bandelette de test 140 , qui demeure dans la partie arrière 104, peut s'étendre au-delà de cette dernière pour faciliter son imprégnation par l'échantillon de boisson à tester, le tampon d’échantillon 141 est arrangé sur la carte de support 130 de façon que son extrémité libre s'avance au-delà de l'extrémité distale 131 de la carte. Cette configuration assure que l'extrémité libre du tampon d’échantillon 141 puisse être imprégnée de préférence par immersion dans la boisson à tester, optimisant ainsi l'absorption de l'échantillon de boisson pour le processus de détection. Pour initier la détection des substances psychoactives ciblées dans une boisson avec la bandelette de test de l’invention, un utilisateur s’empare du boîtier 100 fermé incluant la bandelette de test 140. Il ouvre ensuite le boîtier en détachant la partie avant 104, amovible et sécable, le long de la zone d’amorce de rupture 105. Cette action expose l'extrémité libre du tampon d'échantillon 141 de la bandelette de test 140, comme illustré dans les figures 5 et 6. Ensuite, l'utilisateur applique un échantillon de la boisson à tester sur le tampon d'échantillon 141 par tout moyen connu, par exemple en immergeant l’extrémité libre du tampon d'échantillon 141 directement dans la boisson, ou en déposant une ou plusieurs gouttes sur cette même extrémité en utilisant divers moyens tels qu'une pipette, une paille, une cuillère, ou même le doigt de l'utilisateur. La méthode d’immersion est préférée, car elle garantit que l'échantillon est efficacement absorbé et conduit par capillarité vers les zones de détection de la bandelette de test 140, permettant ainsi une détection précise des substances psychoactives ciblées. Une fois l'échantillon de boisson absorbé dans le tampon d'échantillon 141, il est ensuite libéré par capillarité en direction du tampon absorbant 144, en traversant successivement les zones de détection 142 et 143. Les substances psychoactives contenant une ou plusieurs amines basiques, présentes dans l'échantillon, entrent en réaction avec le réactif de Mandelin situé dans la première zone de détection 142, engendrant une réaction colorimétrique spécifique, facilement identifiable. Par ailleurs, la présence de GHB dans l'échantillon provoque une interaction avec le chimiosenseur situé dans la deuxième zone de détection 143, résultant à la fois en un changement de couleur visible à l'œil nu et en une émission fluorimétrique. Ainsi, l'utilisation de la bandelette de test 140 conçue dans le cadre de la présente invention offre une réponse pratique et efficace contre la menace de la soumission chimique, en alliant rapidité, discrétion, et polyvalence. Cette solution permet une identification presque instantanée (moins de 5 minutes) des substances psychoactives potentiellement dangereuses dans les boissons, jouant un rôle crucial dans la prévention et la sécurité individuelle lors d'événements sociaux ou dans des espaces publics. Sa capacité à tester simultanément diverses substances psychoactives comme la kétamine et le GHB, grâce à des zones de réaction spécifiques, élargit son champ d'application et renforce son efficacité. Conçue pour être intuitive, la bandelette permet une utilisation aisée par un public large, sans nécessiter de compétences particulières, favorisant ainsi son adoption généralisée. Elle se distingue par une approche visuelle directe dans l'interprétation des résultats, éliminant le besoin d'équipements spécialisés et accélérant la prise de décision. En outre, son coût de fabrication réduit, grâce à l'utilisation de matériaux et de réactifs économiques et largement disponibles, garantit son accessibilité et permet une distribution étendue, contribuant de manière significative à une prévention efficace de la soumission chimique. Cette combinaison d'atouts fait de la bandelette de test un outil préventif essentiel, accessible et économique, crucial pour la lutte contre la soumission chimique et l'amélioration de la sécurité publique. Dissimulation du GHB dans la boisson sous forme de GBL : La Demanderesse a en outre découvert, de manière fortuite, que la bandelette de test 140 qu'elle a conçue offre une capacité de détection particulièrement efficace du GHB, y compris dans les situations où ce dernier est dissimulé dans la boisson sous la forme de son précurseur, le gamma-butyrolactone (GBL). Il est important de noter que le GBL, produit chimique, est utilisé dans divers domaines industriels, notamment comme solvant et décapant pour peintures. En tant que précurseur direct du GHB, le GBL se transforme en GHB une fois ingéré, produisant ainsi des effets psychoactifs similaires à ceux du GHB. Cette nouvelle découverte bénéficie d'une synergie remarquable entre les zones de détection 142 et 143 et les réactifs spécifiques qui leur sont associés. Cet effet de synergie permet non seulement la détection immédiate de substances psychoactives ayant une ou plusieurs amines basiques telle que la kétamine, les amphétamines, le MDMA (Ecstasy), et divers alcaloïdes, par un changement de couleur provoqué par le réactif de Mandelin, mais aussi et surtout, la détection du GHB par un changement de couleur distinct. Cette détection est rendue possible grâce à l'acidité créée par le réactif de Mandelin lorsqu'il est mélangé à l'échantillon de boisson, qui favorise la transformation (ou hydrolyse) du GBL en GHB, permettant ainsi une détection efficace du GHB même lorsque celui-ci est initialement présent sous forme de son précurseur, le GBL, dans la boisson. Second mode de réalisation : Les figures 7 à 9 illustrent un second mode de réalisation de l’invention, dans laquelle la bandelette de test 140 est similaire à celle des figures 3 à 6 et ne sera pas à nouveau décrite dans son ensemble. On notera tout d’abord que sur les figures 7 à 9, des éléments ou parties identiques ou similaires à ces figures 3 à 6 sont désignés par les mêmes signes de référence, et l’on décrira seulement les différences de cette seconde forme de réalisation par rapport à la première. Le second mode de réalisation de l’invention est adapté à la détection simultanée de trois types différents de substances psychoactives. Outre sa capacité à détecter la présence de substances psychoactives de premier et second types, dans un échantillon de boisson, via la bandelette de test 140, ce seconde mode de réalisation est particulièrement pertinent pour la détection de substances psychoactives d’un troisième type, désignées ci-après par substances psychotropes. Les substances psychotropes sont des substances chimiques qui ont un effet sur le système nerveux central, altérant l'activité cérébrale et influençant ainsi la perception, l'humeur, le comportement ou la conscience d'une personne. Ces substances peuvent être utilisées de manière malveillante ou abusive, notamment dans des contextes de soumission chimique, où elles sont discrètement dissimulées dans les boissons d'une personne sans son consentement. Le but de telles pratiques est de manipuler ou de contrôler les actions de la personne concernée, conduisant souvent à une altération de sa volonté ou de son discernement. Parmi les exemples de substances psychotropes, on compte, sans limitation, les benzodiazépines, les opioïdes, et les stimulants. Les substances psychotropes sont connues de l'homme du métier et ne nécessitent pas une description complémentaire. Sur les figures 7 à 9, le dispositif portable de test selon ce second mode de réalisation comporte un boîtier 100 dont la chambre interne loge, en plus de la bandelette de test 140, une bandelette d’essai immuno-chromatographique à flux latéral 160 conçue pour la détection d’une substance psychotrope, susceptible d’être présente dans l’échantillon de boisson. Pour des raisons de simplification, la bandelette d’essai immuno-chromatographique à flux latéral 160, est appelée ci-après « bandelette d’essai 160 » ou parfois « bandelette d’essai ». Comme illustré sur les figures 7 à 8, la bandelette d’essai 160 est disposée à côté, à distance et parallèlement à la bandelette de test 140, toutes deux situées au sein de la même chambre interne du boîtier 100 de la présente invention. Les deux bandelettes, 140 et 160, peuvent être soutenues et maintenues en position par la carte de support 130. Ces deux bandelettes peuvent être fixées à la carte de support 130, par exemple, par collage. Cette configuration minimise le risque de contamination croisée entre les bandelettes et réduit les interférences potentielles lors de l'analyse des échantillons de boisson. En maintenant une séparation physique et en stabilisant les bandelettes, le dispositif assure une fiabilité et une précision accrues des résultats de test. Cependant, il est également envisageable de concevoir le dispositif selon un autre mode de réalisation non représenté, où les deux bandelettes, 140 et 160, sont chacune soutenues et maintenues en position par une carte de support séparée. Cette dernière configuration offre plusieurs avantages importants. Elle permet notamment une réduction substantielle du risque de contamination croisée et d'interférence entre les deux bandelettes, contribuant ainsi à l'amélioration de la fiabilité des résultats de test. De plus, la fabrication du dispositif s'en trouve simplifiée, la production de deux cartes de support séparées étant généralement plus aisée et moins onéreuse que celle d'une carte unique destinée à maintenir les deux bandelettes. Les bandelettes peuvent être fixées à leurs cartes de support respectives, par exemple, par collage, facilitant ainsi le processus d'assemblage du dispositif. La fixation de la ou des cartes de support au fond de la partie inférieure 120 du boîtier 100 peut être réalisée par des moyens similaires à ceux évoqués précédemment, tels que le collage avec un adhésif résistant à l’eau, la fixation magnétique, le clipsage, ou tout autre moyen de fixation adapté qui assure une stabilité et une fiabilité optimales lors des analyses. Dans une variante additionnelle non illustrée, les deux bandelettes, 140 et 160, peuvent être fixées directement sur la surface du fond de la partie inférieure 120 ou sur des saillies spécifiques émergeant du fond de la partie inférieure 120. Cette fixation peut être réalisée, par exemple, par collage. On voit plus particulièrement sur les figures 3, 4 et 6 que la bandelette d’essai 160 comprend, en communication fluidique et dans l’ordre suivant : une zone de contact 161 ; une membrane de conjugué 162 ; une membrane de détection de signal 163 munie d’une zone de capture 163a et d’une zone de contrôle 163b ; et facultativement, une membrane absorbante 164. Les éléments constituant la bandelette d’essai 160 vont maintenant être décrits plus en détail. Zone de contact : La zone de contact 161 est positionnée à une extrémité amont de la bandelette de test 160. Sa fonction est de recevoir l'échantillon de boisson pouvant contenir des substances psychoactives de troisième type, désignées ci-après comme la ou les substances psychotropes, et de le diffuser, par capillarité, vers et à travers la membrane de conjugué 162, la membrane de détection de signal 163, et, le cas échéant, le tampon absorbant 164 s'il est présent (ce qui est préférable). Elle peut recevoir l'échantillon de boisson soit par son immersion dans la boisson à tester, soit par le dépôt direct de l'échantillon de boisson, par exemple en versant ou déposant une ou quelques gouttes sur la zone de contact 161, par tout moyen connu, par exemple au moyen d’une pipette, d’une cuillère, d'un stylet ou du doigt de l’utilisateur. Elle peut être constitué de n'importe quel matériau absorbant, tel que la fibre de coton, la fibre de cellulose ou la fibre de verre. Sa longueur et sa largeur varient par exemple de 10 mm à 30 mm pour la longueur et de 5 mm à 10 mm pour la largeur. En pratique, la zone contact 161 a sensiblement la même largeur que les autres composants de la bandelette d’essai 160. Membrane de conjugué : En se référant une fois de plus aux figures 7 et 9, la membrane de conjugué 162 est positionnée adjacente à la zone de contact 161 et en communication fluide avec celle-ci. De préférence, l’extrémité proximale de la zone de contact 161 chevauche la membrane de conjugué 162. En pratique, la membrane de conjugué 162 est conçue pour accueillir un échantillon de boisson provenant de la zone de contact 161. Cette membrane peut être constituée de divers matériaux permettant la migration de l’échantillon de boisson, qui peut contenir des substances psychoactives (incluant des substances psychotropes), ainsi que des anticorps marqués mobilisables (décrits ci-après), préalablement appliqués sur la membrane de conjugué 162. Ces éléments peuvent se déplacer à travers la membrane principalement par capillarité ou flux latéral. Par exemple, les matériaux utilisés pour former la membrane du conjugué 162 peuvent inclure, mais sans s’y limiter, les fibres de verre ou les fibres de cellulose, plus particulièrement des fibres de nitrocellulose. La membrane du conjugué 162 a une longueur, dans le sens de l’écoulement de l’échantillon de boisson, pouvant varier de 5 mm à 20 mm, par exemple de 8 mm à 12 mm, et une largeur pouvant varier de 2 mm à 10 mm, par exemple de 3 mm à 7 mm. En pratique, la membrane du conjugué 162 a sensiblement la même largeur que les autres composants de la bandelette d’essai 160. De manière avantageuse, la membrane du conjugué 162 incorpore un conjugué d’anticorps mobile (ou mobilisable) comprenant un marqueur associé à un anticorps conçu pour se lier spécifiquement à au moins une substance psychotrope ciblée. Ce conjugué d’anticorps est typiquement immobilisé, à l’état sec, sur ou dans la membrane de conjugaison 162 jusqu'à l’utilisation du dispositif portable de test dans le cadre du second mode de réalisation de l’invention. Le terme « marqueur » désigne un agent indicateur utilisé pour détecter visuellement la présence ou l'absence de la substance psychotrope ciblée dans l'échantillon de boisson testé. Plus spécifiquement, le marqueur employé peut appartenir à diverses catégories couramment employées dans les tests immunochromatographiques rapides, tels que les bandelettes. Ces catégories incluent : - Les marqueurs fluorescents ou fluorophores, comme la fluorescéine ou la rhodamine, permettant une détection basée sur la fluorescence. - Les marqueurs particulaires, tels que l'or colloïdal, les particules de latex ou de carbone, qui permettent une visualisation directe. - Les marqueurs chimiluminescents, tels que les dioxétanes, les acridiniums, les phénanthridiniums, le ruthénium et le luminol, pour leur capacité à générer de la lumière après une réaction chimique. Dans les applications pratiques de la présente invention, les marqueurs préférés sont de type particulaires, tels que les nanoparticules de latex (généralement produisant une couleur bleue) ou les nanoparticules d'or colloïdal (généralement produisant une couleur rouge), pour une détection visuelle améliorée. Le terme "nanoparticules" a sa signification générale dans la technique et fait référence à des particules ayant une taille moyenne ou médiane de 1000 nm ou moins, généralement de 500 nm ou moins, souvent de 400 nm ou moins, et le plus souvent de 250 nm ou moins. Dans des modes de réalisation particuliers, les nanoparticules d'or colloïdal sont spécifiquement choisies pour avoir une taille de 10 à 100 nm afin de bénéficier de leurs propriétés optiques distinctives. Par ailleurs, les nanoparticules de latex peuvent avoir une taille de 10 nm à 500 nm, avec une préférence pour une gamme de 100 nm à 400 nm, optimisée pour améliorer la visibilité. L'homme du métier est familier avec diverses méthodes et techniques pour synthétiser les nanoparticules d'or colloïdal et pour les conjuguer avec des anticorps spécifiques (voir par exemple, l'article de Yifan Gao, et al. « A sensitive lateral flow immunoassay for the multiple residues of five adamantanes », Food and Agricultural Immunology”, 2019, 30:1, 647-661.). Le terme « mobile » ou "mobilisable" en ce qui concerne le conjugué d'anticorps, désigne sa capacité à se déplacer ou à migrer au sein de la membrane de conjugaison 162 (et à travers le reste de la bandelette d’essai 160) lorsqu'elle est imprégnée ou saturée par l'échantillon de boisson provenant de la zone de contact 161, lors de l'utilisation du dispositif portable de test selon la présente invention. Cette mobilité facilite ainsi la détection ou la quantification des substances ciblées. L’intégration du conjugué d'anticorps à la membrane de conjugaison 162 peut être réalisée par diverses techniques connues, y compris l'imprégnation ou la pulvérisation, avant une phase de séchage. De préférence, le conjugué d’anticorps mis en œuvre est un anticorps conjugué à des nanoparticules d’or colloïdal (de taille inférieure à 100 nm, de préférence inférieure à 50 nm). Préférentiellement, l’anticorps contenu dans le conjugué d’anticorps est un anticorps monoclonal par exemple un anticorps monoclonal de souris. Les anticorps monoclonaux offrent les avantages de pureté et d’homogénéité. Les substances psychotropes ciblées peuvent être sélectionnées parmi celles appartenant aux catégories des benzodiazépines, des opioïdes et des stimulants. La catégorie des benzodiazépines comprend, sans limitation, l'adinazolam, l'alprazolam, le bentazépam, le bretazenil, le bromazépam, le brotizolam, le camézépam, le chlordiazépoxide, le cinazépam, le cinolazépam, le clobazam, le clonazépam, le clorazépate, le clotiazépam, le diazépam, le flunitrazépam, le lorazépam, le lormétazépam, le médozépam, le midazolam, le nitrazépam, l'oxazépam, le temazépam, le tiéprazolam et leurs combinaisons. La catégorie des opioïdes comprend, sans limitation, la morphine, la codéine, l'oxycodone, l'hydrocodone, le fentanyl, la mépéridine (Démérol), la méthadone, le tramadol, l'hydromorphone (Dilaudid) et la buprénorphine. La catégorie des stimulants comprend, sans limitation, la cocaïne, l'amphétamine, la méthamphétamine, le méthylphénidate (Ritaline), l'éphédrine, la dextroamphétamine (Dexedrine), le modafinil, et la MDMA (ecstasy). La majorité des telles substances psychotropes possèdent des structures chimiques caractérisées par la présence d'amines, aliphatiques ou aromatiques, conférant à ces substances des propriétés basiques. Ces substances psychotropes peuvent se retrouver dans les boissons dissimulées sous forme de sels solubles. A ce sujet, le terme "substances psychotropes" s'étend pour inclure non seulement ces substances psychotropes dans leur forme de base mais aussi leurs dérivés salins solubles dans les boissons. Le terme "sels solubles" fait référence à ceux qui conservent l’activité biologique et les propriétés des bases libres, dans le contexte des substances psychotropes. Les sels peuvent être formés avec des acides inorganiques tels que l'acide chlorhydrique, l'acide sulfurique, l'acide phosphorique et similaires, ou des acides organiques tels que l'acide acétique, l'acide propionique, l'acide glycolique, l'acide pyruvique, l'acide oxalique, l'acide maléique, l'acide malonique, l'acide salicylique, l'acide succinique, l'acide fumarique, l'acide tartrique, l'acide citrique, et similaires. Les anticorps ciblant spécifiquement les substances psychotropes, comme les benzodiazépines, la morphine, le fentanyl, la cocaïne ou les (méth)amphétamines, sont accessibles via divers fournisseurs commerciaux. ou peuvent être produits en utilisant des protocoles bien établies dans le domaine des immunoessais. Initialement conçus pour des applications de tests rapides, de tels anticorps sont actuellement employés de manière courante pour la détection de substances psychoactives dans des échantillons d'urine. Pour rappel, la production d'anticorps, monoclonaux ou polyclonaux, débute typiquement par l'immunisation d'un animal hôte, tel qu'une souris, avec un antigène soigneusement conçu pour imiter la structure de la substance psychotrope cible. Cette démarche inclut fréquemment la conjugaison de la substance cible (par exemple l’oxazépam, une benzodiazépine) à une protéine porteuse, telle que l'albumine sérique bovine (BSA) pour en améliorer l'immunogénicité. Après plusieurs cycles d'immunisation, le sérum de l'animal est collecté et les anticorps sont purifiés via différentes méthodes de chromatographie. Dans le cas des anticorps monoclonaux, les lymphocytes B producteurs d'anticorps sont isolés puis fusionnés avec des cellules de myélome, créant ainsi des hybridomes qui peuvent être cultivés in vitro pour produire des anticorps en grande quantité. Ces procédures standardisées permettent de générer des anticorps hautement spécifiques, capables de reconnaître et de se lier de manière sélective à la substance psychotrope cible dans des échantillons complexes. Pour une discussion sur les techniques de production d’anticorps dirigés contre les petites molécules telles que les substances psychotropes, on pourra se référer aux articles et document de brevet suivants : - Zhenhui Ren et al. ;." Progress in Immunoassays of Toxic Alkaloids in Plant-Derived Medicines”: A Review. Toxins, 2022, 14 , 165; et - Zidane Qriouet, et al. ; “Monoclonal Antibodies Application in Lateral Flow Immunochromatographic Assays for Drugs of Abuse Detection”, Molecules, 2021, 26, 1058. - Susan Kashanian, et al.; “Preparation and Characterization of a Monoclonal Antibody Against Morphine”; Monoclonal Antibodies in Immunodiagnosis and Immunotherapy, 2015, 34:4, 270-274. - WO2006063829A2 : Dérivés et conjugués de methamphetamines pour dosage immunologique. De nombreux anticorps monoclonaux, conçus pour cibler une benzodiazépine spécifique comme l'oxazépam ou le diazépam, possèdent la capacité de reconnaître d'autres benzodiazépines en raison de leurs similarités structurelles. Cette réactivité croisée permet à un seul anticorps de détecter plusieurs substances distinctes au sein de cette catégorie, optimisant ainsi l'efficacité de la détection. Par exemple, des anticorps monoclonaux de souris dirigés contre l'oxazépam peuvent identifier d'autres benzodiazépines, y compris l'alprazolam, le bromazépam, le chlordiazépoxide, le clonazépam, le clobazam, le lorazépam, le clorazépate, le flunitrazépam et le diazépam, parmi d'autres, augmentant l'étendue de la détection de ces substances psychotropes. Cette notion de réactivité croisée s'applique aussi à d'autres classes de substances psychotropes, y compris les opioïdes tels que la morphine et le fentanyl, ou les stimulants tels que la cocaïne et les (méth)amphétamines. Les anticorps élaborés pour cibler spécifiquement une substance dans chacune de ces catégories peuvent souvent détecter d'autres substances similaires au sein de la même catégorie, grâce aux similitudes structurelles entre les substances considérées. Ainsi, un anticorps visant la morphine peut reconnaître d'autres opioïdes, et un anticorps ciblant la cocaïne peut identifier d'autres alcaloïdes de coca. Exploitant cette capacité de détection polyvalente, la présente invention propose une approche de détection adaptable, capable d'identifier simultanément plusieurs variantes de benzodiazépines, opioïdes, ou stimulants dans un unique échantillon de boisson. Cette approche renforce considérablement la performance et l'application des tests, facilitant une détection rapide et fiable des benzodiazépines, ainsi que d'autres substances psychotropes, dans les boissons. Dans certaines modes de réalisation de la présente invention, le conjugué d’anticorps se compose de nanoparticules d'or colloïdal auxquelles sont liés des anticorps monoclonaux de souris. Ces anticorps sont élaborés pour reconnaître et se lier de façon spécifique à des substances psychotropes cibles, choisies de préférence parmi les benzodiazépines, la morphine, le fentanyl, la cocaïne et les (méth)amphétamines. Dans un mode de réalisation particulier, la substance psychotrope cible appartient à la catégorie des benzodiazépines. Elle peut être sélectionnée parmi l'adinazolam, l'alprazolam, le bentazépam, le bretazenil, le bromazépam, le brotizolam, le camézépam, le chlordiazépoxide, le cinazépam, le cinolazépam, le clobazam, le clonazépam, le clorazépate, le clotiazépam, le diazépam, le flunitrazépam, le lorazépam, le lormétazépam, le médozépam, le midazolam, le nitrazépam, l'oxazépam, le temazépam, le tiéprazolam et leurs combinaisons. Dans un autre mode de réalisation particulier, la substance psychotrope ciblée est la morphine. Dans un autre mode de réalisation particulier, la substance psychotrope ciblée est le fentanyl. Dans encore un autre mode de réalisation particulier, la substance psychotrope ciblée est l’amphétamine et/ou la méthamphétamine. Le ou les complexes formés par l'interaction de l’anticorps conjugué avec la ou les substances psychotropes ciblées, présentes dans l'échantillon de boisson, sont capables de migrer à travers la membrane de conjugué 162, principalement par le biais du flux latéral ou de la capillarité. Membrane de détection de signal : En se référant une fois de plus aux figures 7 et 9, la bandelette d’essai 160 comprend une membrane de détection de signal 163 positionnée adjacente à la membrane de conjugué 162 et en communication fluide avec elle. De préférence, l’extrémité libre (ou proximale) de la membrane de conjugué 162 chevauche la membrane de détection de signal 163. Concrètement, la membrane de détection de signal 163 est conçue pour accueillir un échantillon de boisson qui a traversé la membrane de conjugué 162. Le conjugué d'anticorps non lié et/ou le complexe formé entre l'anticorps conjugué et la substance psychotrope ciblée, dans le cas où celle-ci est présente dans l'échantillon de boisson, peuvent également migrer par capillarité vers la membrane de détection de signal 163. La membrane de détection de signal 163 peut être fabriquée à partir de divers matériaux poreux, permettant la migration de l’échantillon de boisson, ainsi que de l'anticorps libre ou complexé à la substance psychotrope ciblée, si cette dernière est présente dans l'échantillon de boisson. Parmi les matériaux utilisables, on peut citer à titre d’exemples, mais sans s’y limiter, la cellulose, la nitrocellulose, l'acétate de cellulose, d'ester de cellulose mixte, la fibre de verre, le difluorure de polyvinylidène, le polyester, et le polycarbonate. De préférence, la membrane de détection de signal 163 est réalisée en nitrocellulose ou en fibre de verre. La membrane de détection de signal 163 a une longueur, dans le sens de l’écoulement de l’échantillon de boisson, pouvant varier de 5 mm à 20 mm, par exemple de 8 mm à 12 mm, et une largeur pouvant varier de 2 mm à 10 mm, par exemple de 3 mm à 7 mm. En pratique, la membrane de détection de signal 163 a sensiblement la même largeur que les autres composants de la bandelette d’essai 160. Typiquement, la membrane de détection de signal 163 comprend : - une région de capture 163a, communément appelé ligne de test ; et - une région de contrôle 163b, communément appelé ligne de contrôle. Zone de capture 163a : La zone de capture 163a comprend un agent de capture immobilisé. Cet agent est conçu pour se lier de manière sélective à l'anticorps présent dans l'anticorps conjugué, mais pas à la substance psychotrope ciblée. Cette sélectivité permet à l'agent de capture d'immobiliser l'anticorps conjugué sur la zone de capture 163a uniquement lorsque la substance psychotrope n'est pas présente dans l'échantillon de boisson testé. Ce processus est possible grâce à un phénomène de compétition entre l'agent de capture et la substance psychotrope pour se lier à l'anticorps. Lorsque la substance psychotrope est absente, l'agent de capture se lie à l'anticorps conjugué et un signal visuel est généré, tel qu'une ligne colorée. Ce signal indique l'absence de la substance psychotrope dans l'échantillon testé. En revanche, lorsque la substance psychotrope est présente dans l’échantillon, elle se lie à l'anticorps conjugué en premier lieu, empêchant ainsi l'agent de capture de s'y fixer. Par conséquent, aucun signal visuel n'est généré, indiquant la présence de la substance psychotrope dans l'échantillon testé. En résumé, un résultat positif - indiquant la détection de la ou des substance(s) psychotrope(s) ciblée(s) - est marqué par l'absence de signal visuel dans la zone de capture 163a. Par « agent de capture», on entend la substance psychotrope ciblée elle-même ou un analogue approprié de celle-ci. Par « analogue approprié » de la substance psychotrope ciblée, on entend un analogue se liant de manière sélective à l’anticorps du conjugué (mais pas avec la substance psychotrope ciblée). Le terme « immobilisé », lorsqu'il se réfère à l’agent de capture, indique que celui-ci est fixé à la zone de capture, directement ou indirectement, par des liaisons covalentes ou non covalentes, ou encore par adsorption. Il peut également être lié de manière covalente à un agent de liaison, lequel est lui-même fixé à la zone de capture via des liaisons covalentes, non covalentes ou par adsorption. Un tel agent agent de liaison peut être un PolyEthylène Glycol (par exemple un PEG 1000 ou 2000) ou une protéine telle que l'Albumine de Sérum Bovin (BSA) ou l'Albumine de Sérum Humain (HSA). Dans un mode de réalisé préféré, l’agent de liaison est la BSA. A titre d’illustration uniquement, lors de la détection de benzodiazépines dans un échantillon de boisson avec la bandelette d'essai 160, les substances psychotropes ciblées peuvent être le diazépam et/ou le flunitrazépam. Dans ce cas, l'oxazépam, un analogue approprié du diazépam et du flunitrazépam, peut être utilisé comme agent de capture. Il est de préférence lié à agent de liaison tel que la HSA ou BSA, pour optimiser la spécificité et l'efficacité de la détection. La zone de capture 163a comportant l’agent de capture peut être de toute forme géométrique plane (rectangulaire, carré, en triangle, circulaire, ovale, etc.). Sa surface peut varier de 2 mm 2 à 40 mm 2 . Dans un mode de réalisation particulier, la zone de capture 163a a une longueur dans le sens du flux de l’échantillon de boisson, de 1 mm à 3 mm, et une largeur sensiblement égale à la largeur de la membrane de détection de signal 163. Zone de contrôle 163b : En se référant une fois de plus aux figures 7 et 9, la zone de contrôle 163b est positionnée, dans la membrane de détection de signal 163, à distance de la zone de capture 163a. Cette zone de contrôle 163b est dotée d'un anticorps de contrôle immobilisé. Cet anticorps est conçu pour se lier de manière spécifique à l'anticorps présent dans le conjugué d'anticorps, confirmant ainsi la migration du conjugué d'anticorps le long de la bandelette d'essai 160, que la substance psychotrope ciblée soit présente ou non dans l'échantillon de boisson testé. L'interaction entre l'anticorps de contrôle et l'anticorps contenu dans le conjugué d’anticorps génère un signal visuel et/ou détectable. Ce signal est toujours présent, indépendamment de la présence ou de l'absence de la substance psychotrope ciblée dans l'échantillon testé. En présence de la substance psychotrope, le signal visuel dans la zone de capture 163a est absent, tandis que le signal visuel dans la zone de contrôle 163b est toujours présent. Cela permet de confirmer la validité du test et de lever tout doute quant à la fonctionnalité de la bandelette d'essai 160. En l'absence de la substance psychotrope, le signal visuel est présent dans les deux zones, 163a et 163b. Ceci confirme la présence du conjugué d'anticorps et le bon fonctionnement de la bandelette d'essai. Ainsi, la zone de contrôle 163b joue un rôle crucial en garantissant la fiabilité du test en confirmant la migration du conjugué d'anticorps et en servant de témoin interne de la fonctionnalité de la bandelette d'essai. Le terme « immobilisé », en lien avec l’anticorps de contrôle, indique que celui-ci est associé à la zone de contrôle 163b, directement ou indirectement, par des liaisons covalentes ou non covalentes, ou encore par adsorption. L’immobilisation de l’anticorps de contrôle sur ou dans la zone de contrôle 163b peut être réalisée selon diverses méthodes connues, telles que l'imprégnation ou la pulvérisation du l’anticorps de contrôle sous la forme d’au moins une solution, suivie d'une étape de séchage, par exemple par lyophilisation ou sous flux d’air à la température ambiante (25° ± 5°C) pour assurer son immobilisation complète. La zone de contrôle 163b comportant l’agent de capture peut être de toute forme géométrique plane (rectangulaire, carré, en triangle, circulaire, ovale, etc.). Sa surface peut varier de 2 mm 2 à 40 mm 2 . Dans un mode de réalisation particulier, la zone de contrôle 163b a une longueur dans le sens du flux de l’échantillon de boisson, de 1 mm à 3 mm, et une largeur sensiblement égale à la largeur de la membrane de détection de signal 163. Dans des modes de réalisation de l’invention, le conjugué d’anticorps peut être un anticorps monoclonal de souris conjugué à des nanoparticules d’or colloïdal et, l’anticorps de contrôle peut être un anticorps IgG de chèvre ou de lapin anti-souris, spécifiquement conçu pour reconnaître et se lier aux anticorps de souris, garantissant ainsi une réaction de contrôle efficace indépendamment de la présence de la substance psychotrope cible dans l'échantillon testé. Membrane absorbante 164 : Comme illustré aux figures 7 et 9, la bandelette d’essai 160 est dotée d’une membrane absorbante 164 qui est positionnée adjacente à la membrane de détection de signal 163 et en communication fluide avec celle-ci. De préférence, la membrane absorbante 164 se chevauche avec l’extrémité libre de la membrane de détection de signal 163. Cette membrane absorbante 164 récupère le fluide ayant migré à travers la zone de de contact 161, la membrane de conjugué 162 et la zone de détection de signal 163 et permet donc de promouvoir l'action de la migration capillaire et le flux de l’échantillon de boisson et des différents réactif ou agents repris dans l’échantillon de boisson, à travers la bandelette d’essai 160. . Un expert dans l'art reconnaîtra que la présence de la membrane absorbante 164 n’est pas strictement indispensable. En effet, l’utilité de cette membrane absorbante peut être contournée, par exemple, en allongeant la longueur de la membrane de détection 163 au-delà de la ou des zones de contrôle 163b, assurant ainsi un transport efficace et continu de l'échantillon de boisson à travers toutes les zones nécessaires pour une détection précise, sans nécessiter une membrane additionnelle pour maintenir ou augmenter le flux de l'échantillon. La membrane absorbante 164 peut être fabriquée à partir d'une variété de matériaux absorbants convenant à cet usage, incluant, mais sans s'y limiter, la fibre de coton, la fibre de cellulose, ainsi que d'autres matériaux absorbants comparables. Sa longueur et sa largeur, peuvent varier respectivement de 3 mm à 10 mm, par exemple de 4 à 8 mm ; et de 2 mm à 10 mm, par exemple de 3 mm à 6 mm. En pratique, la membrane absorbante 164 a sensiblement la même largeur que les autres composants de la bandelette d’essai 160. Assemblage de la bandelette d’essai 160 : Comme pour l’assemblage de bandelette de test 140 décrit précédemment, la bandelette d’essai 160 montrée aux figures 7 et 8 peut être assemblée par des procédés bien connus de l'homme du métier, du type comprenant : - une étape de fixation de la membrane de détection de signal 163 sur la carte de support 130, par exemple par collage ; - une étape de fixation de la membrane de conjugué 162 sur la carte de support 130, par exemple par collage, avec un chevauchement sur membrane de détection de signal 163 ; - une étape de fixation de la zone de contact 161 sur la carte de support 130, par exemple par collage, avec un chevauchement sur la membrane de conjugué 162; - une étape de fixation de la membrane absorbante 164 sur la carte de support 130, par exemple par collage, avec un chevauchement sur la membrane de détection de signal 163. Dans une réalisation pratique, comme illustré sur les figures 7 et 9, la zone de contact 161 est fixé sur la carte de support 130 de manière à ce que son extrémité libre dépasse au-delà de l'extrémité distale 131 de la carte de support. Cette disposition permet à l'extrémité libre de la zone de contact 161 d'être immergée dans la boisson à tester, facilitant ainsi l'absorption de l'échantillon de boisson à des fins de détection. Utilisation du dispositif selon le second mode de réalisation : Pour détecter des substances psychoactives, y compris les psychotropes, dans un échantillon de boisson avec le dispositif selon le second mode de réalisation, la procédure initiale reste semblable à celle employée dans le premier mode de réalisation. Tout d'abord, l'utilisateur saisit le boîtier 100 fermé, lequel contient à la fois la bandelette de test 140 et la bandelette d'essai 160. Il ouvre ensuite le boîtier en détachant la partie avant 104 amovible et sécable, le long de la zone d’amorce de rupture 105. Cette action expose l'extrémité libre du tampon d'échantillon 141 de la bandelette de test 140 et l'extrémité libre de la zone de contact 161 de la bandelette d'essai 160, comme illustré dans les figures 8 et 9. L'étape suivante consiste à appliquer l'échantillon de boisson à tester sur les deux bandelettes, 140 et 160. Pour ce faire, l'utilisateur peut immerger directement les extrémités libres des bandelettes dans la boisson ou y déposer une ou plusieurs gouttes à l'aide d'une pipette, d'une paille, d'une cuillère, ou même directement avec le doigt. La méthode d'immersion est recommandée pour assurer une absorption optimale de l'échantillon, qui sera ensuite acheminé par capillarité vers les zones de détection spécifiques de chaque bandelette. La bandelette de test (chimique) 140 cible les substances psychoactives de premier et second types à travers des réactions chimiques spécifiques, offrant une première indication de la présence potentielle de ces substances psychoactives. La bandelette d'essai immuno-chromatographique 160, quant à elle, utilise une technologie basée sur des conjugués d’anticorps spécifiques, permettant une identification précise et visuelle de substances psychotropes ciblées grâce à des zones de capture et de contrôle spécialement conçues. Le dispositif portable de détection selon le second mode de réalisation de l’invention offre ainsi une approche sélective et efficace pour l'identification de substances psychoactives dans des échantillons de boissons. En combinant les capacités de la bandelette de test chimique 140 avec celles de la bandelette d'essai immuno-chromatographique 160, ce dispositif portable fournit une solution complète pour la détection rapide et fiable de diverses substances psychoactives dont des psychotropes. En particulier, dans le contexte de la prévention des soumissions chimiques, ce dispositif offre un outil puissant pour les individus, leur permettant de tester rapidement et discrètement les boissons pour la présence de substances psychoactives non désirées, contribuant ainsi à une plus grande sécurité individuelle. Procédé de fabrication du dispositif selon l’invention : La présente invention vise également un procédé de fabrication du dispositif portable de test tel que défini précédemment, comprenant les étapes successives suivantes : a) fourniture des parties supérieure et inférieure 110 et 120 du boîtier 100; chacune desdites partie supérieure et inférieure 110 et 120 intégrant une zone d’amorce de rupture 105, prévue pour faciliter l'ouverture ou l'accès ultérieur au contenu du boîtier 100 ; b) placement de la bandelette de test 140 et le cas échéant la bandelette d’essais 160, à l'intérieur de la partie inférieure 120, fournie à l'étape a) ; c) assemblage du boîtier 100 en positionnant la partie supérieure 110 sur la partie inférieure 120 contenant ladite ou lesdites bandelettes. A l’étape b) de ce procédé, il convient de veiller à ce que l'alignement entre les deux parties supérieure et inférieure 110 et 120 du boîtier 100, prenne en compte la zone d'amorce de rupture 105 pour garantir son efficacité une fois le boîtier 100 fermé, pour former l'ensemble du boîtier. Afin de renforcer l'étanchéité du boîtier 100 une fois assemblé, il est envisageable d'utiliser divers moyens d’étanchéification tels que, mais sans s'y limiter, le scellement des joints avec des mastics ou adhésifs spécifiques à haute résistance à l'eau, l'incorporation de joints d'étanchéité en matériaux souples (silicone, caoutchouc) entre les parties supérieure et inférieure 110 et 120 du boîtier 100, et l'application de revêtements hydrophobes sur les surfaces externes. Portabilité et Discrétion : Le dispositif portable de détection selon l’invention est conçu pour une discrétion optimale. Il peut être aisément dissimulé dans la paume de la main, logé dans une poche ou transporté dans un petit sac. Pour une intégration harmonieuse dans le quotidien, il peut se présenter sous différentes formes telles qu’un porte-clés, une montre-bracelet, un pendentif, une broche, ou tout autre accessoire compact, facilitant ainsi son port de manière visible mais discrète par tout utilisateur ou utilisatrice. Utilisation & Trousses : La présente invention vise également l'utilisation du dispositif portable de test objet de l’invention pour la détection simultanée de substances psychoactives, y compris les substances psychotropes, dans un échantillon de boisson. Elle concerne également une trousse comprenant un dispositif portable de test conforme à l’invention, des instructions détaillées pour l'utilisation du dispositif, ainsi que des matériaux supplémentaires facilitant son emploi, tels que des pailles ou pipettes pour le prélèvement aisé et hygiénique de l'échantillon de boisson à tester. Cette trousse vise à offrir une solution complète pour la détection rapide et efficace de substances psychoactives dans des boissons, permettant ainsi une utilisation sûre et informée par l'utilisateur ou l'utilisatrice, avec tout le nécessaire pour mener à bien le test dans divers contextes et environnements. De telles instructions détaillées peuvent contenir : un bref aperçu du dispositif, de son but et de son importance dans la détection de substances psychoactives dans les boissons ; un inventaire des éléments inclus dans la trousse, tels que le dispositif de détection, des pailles ou pipettes pour le prélèvement de l'échantillon, et tout autre accessoire pertinent ;des instructions détaillées sur la manière de collecter un échantillon de boisson en utilisant les matériaux fournis, telles que les étapes pour utiliser correctement une paille ou une pipette ; un guide pas à pas expliquant comment placer l'échantillon de boisson sur le dispositif, activer le test, et attendre les résultats, une légende colorimétrique explicative pour aider les utilisateurs à interpréter facilement les résultats du test en associant des couleurs spécifiques à la présence ou l'absence de substances psychoactives détectées ; et éventuellement, des conseils sur les actions à entreprendre en fonction des résultats du test, y compris des recommandations de sécurité et des suggestions pour contacter des autorités ou des services d'assistance si nécessaire. L’agencement des différents éléments et/ou moyens et/ou étapes de l’invention, dans les modes de réalisation décrits ci-dessus, ne doit pas être compris comme exigeant un tel agencement dans toutes les implémentations. Notamment, une ou plusieurs caractéristiques exposées seulement dans un mode de réalisation peuvent être combinées avec une ou plusieurs autres caractéristiques exposées seulement dans un autre mode de réalisation. Par exemple, - le boîtier 100 peut être fabriqué à partir d'une matière opaque. Dans ce cas, la lecture des résultats peut être effectuée en retirant la/les bandelette(s) utilisées de la partie arrière du boîtier. - Le boîtier 100 peut en outre contenir un élément absorbant l'humidité pour maintenir l'air sec, par exemple un sac miniature rempli d’un tamis moléculaire ou d’un gel de silice, et/ou être placé dans un film étanche à l’air, par exemple un film PVC (pour polychlorure de vinyle), lorsque la chambre interne du boîtier 100 n’est pas complètement étanche. Ci-après, la présente invention sera décrite plus en détail à l'aide d'exemples. Il est à comprendre, cependant, que ces exemples sont uniquement à des fins illustratives et ne sont pas interprétés pour limiter la portée de la présente invention. Exemples Exemple 1 : Fabrication et utilisation d’un dispositif portable conforme à l’invention. Fabrication : Un dispositif portable 10 conforme à l’invention a été fabriqué à partir des composants indiqués ci-dessous. Tampon d’échantillon 141 (Ashlstrom ReliaFlow® 6614) ayant les dimensions suivantes : longueur 18 mm et largeur 4 mm. La première zone de détection 142 (Ashlstrom ReliaFlow® 6614) : ayant les dimensions suivantes : longueur 7 mm et largeur 4 mm. Environ 3 mm de l’extrémité proximale du tampon d’échantillon 141 chevauche cette première zone de détection 142. L’immobilisation de l’indicateur coloré dans ladite zone de réaction 142a a été effectuée par un dépôt goutte à goutte d’environ 0,05 mL du réactif de Mandelin modifié (solution de 1 g de vanadate d’ammonium dans 100 mL d’acide sulfurique concentré à 85% en poids (dilué avec de l’eau)), suivi d’une étape de séchage à 25°C et dans une atmosphère à humidité contrôlée, de préférence, inférieure à 30% d'humidité relative. La deuxième zone de détection 143 (Nitrocellulose, Sigma Aldrich) : 12 mm. Environ 4 mm de l’extrémité libre de première zone de détection chevauche cette deuxième zone de détection 143. L’immobilisation du chimiosenseur (complexe métallique borodipyrométhène (BODIPY)-fer(III) de formule chimique [Chem.1]) dans ladite zone réactive 143a a été effectuée par un dépôt goutte à goutte d’environ 0,05 mL d’une solution de 2 mM de ce chimiosenseur dans le méthanol, suivi d’une phase de séchage à l’air libre et à 25°C. La préparation du complexe métallique borodipyrométhène (BODIPY)-fer(III) est décrite dans l’article de Junghyun Ryu et al., 2022, mentionné précédemment). Le tampon absorbant 144 (Coton ; Ahlstrom, Grade 222) : 5 mm. Environ 2,5 mm de l’extrémité libre de deuxième zone de détection 143 est chevauchée par ce tampon absorbant. L’assemblage de la bandelette 140 a été réalisée en utilisant une carte de support 130 adhésive (Matériau : polyester ; Fournisseur : Kenosha, référence KN-2211), comme illustré sur la FIG. 4 : - Collage de la deuxième zone de détection 143 sur la carte de support 130 ; - Collage de la première zone de détection 142 sur la carte de support 130 avec un chevauchement sur la deuxième zone de détection 143 ; -.Collage du tampon d’échantillon 141 sur la carte de support 130 avec un chevauchement sur la première zone de détection 142 en faisant en sorte que l’extrémité libre du tampon d’échantillon 141 dépasse l’extrémité distale 131 de la carte de support 130 ; - Collage du tampon absorbant 144 sur la carte de support 130 avec un chevauchement sur la deuxième zone de détection 143. La carte de support 130 avait les dimensions suivantes : longueur 25 mm et largeur 300 mm, avant découpage de la carte de support 130 et des bandelettes supportées par elle. Les parties inférieure et supérieure 110 et 120 du boîtier 100 sont identiques (polystyrène transparent ; longueur 43 mm, largeur 14 mm et profondeur 3 mm). Elles intègrent chacune une zone d'amorce de rupture 105. Leurs parties avant, correspondant à la partie avant amovible et sécable du boîtier, ont une longueur d’environ 15 mm. Les parties inférieure et supérieure 110 et 120, y compris leurs zones d'amorce de rupture respectives, ont été fabriquées par moulage. La bandelette de test 140 installée sur la carte de support 130 a été placée et maintenue en position dans la partie inférieure 120 du boîtier 100. La partie supérieure 110, identique à la partie inférieure 120, et cette dernière ont été assemblées ensemble pour obtenir le boîtier 100 ayant une chambre interne logeant la bandelette de test 140. Un adhésif (Colle cyanoacrylate de marque Threebond®, référence 1747) résistant à l'eau a été appliqué le long du pourtour de l'interface entre les parties supérieure et inférieure, 110 et 120, pour assurer ou renforcer l'étanchéité du boîtier 100. Toutes les étapes depuis la fabrication des zones de détections 142 et 143, avec les zones réactives correspondantes jusqu’à l’assemblage des parties supérieure et inférieure110 et 120 pour former le boîtier 100 ont été réalisées dans une atmosphère à humidité contrôlée; de préférence inférieure à 30% d'humidité relative, et à température ambiante (25°C). La boîtier 100 incluant la bandelette de test 140 tient dans une paume de main, ou peut être logé dans une poche ou transporté dans un petit sac. Détection de la présence de la kétamine et du GHB dans des boissons : Le dispositif portable de l’invention a été utilisé pour la détection de la kétamine ( 2 mg/mL) et du GHB (1 mg/mL) dissout dans les boissons suivantes (un dispositif portable par boisson) : Eau de robinet ; Eau de robinet + 10% éthanol ; Eau de robinet + 20% éthanol ; Eau de robinet + 40% éthanol ; Rhum ; Vin blanc ; Cidre ; Vodka ; Whisky ; Jus de pomme ; Tonic. Tout d’abord, la Demanderesse a pu constater que la partie avant 104 amovible et sécable du boîtier 100 du dispositif portable de l’invention se détache aisément de la partie arrière 103 le long de la zone d’amorce de rupture, lorsque la pression est exercée de manière appropriée, permettant ainsi de faire apparaître le tampon d’échantillon de 141. Le tampon d’échantillon de 141 de chaque dispositif portable a été immergé (moins de 2 secondes) dans la boisson testée pour absorber un échantillon de boisson. la Demanderesse a également pu observer, qu’il y a absorption d’un échantillon de boisson dans le tampon d’échantillon, puis un changement de couleur, du jaune-orangé au violet dans la zone de réaction 142a de la première zone de détection 142, indiquant la présence de la kétamine dans l’échantillon de boisson absorbé, et un changement de couleur, du rose à beige ou ivoire dans la zone de réactive 143a de la deuxième zone de détection 143a, indiquant la présence du GHB dans l’échantillon de boisson absorbé. Les changements de couleur sont apparus rapidement en moins de 2 min. Détection du GHB dissimulé sous forme de GBL : Le dispositif portable de l’invention a également été utilisé pour la détection du GHB dissimulé dans de l’eau sous forme de son précurseur le GBL. La Demanderesse a effectué deux tests l’un avec une bandelette de test 141 conformément à l’invention et l’autre avec une bandelette de test témoin ne comportant que le tampon d’échantillon 141 chevauchant directement la deuxième zone de détection 143 laquelle est chevauchée par le tampon absorbant 144. Le tampon d’échantillon de 141 de la bandelette de test 140 ainsi que celui de la bandelette de test témoin ont été immergé dans l’eau dans lequel du GBL (5 mg/mL) a été dissout. La Demanderesse a observé un changement de couleur, passant du rose au beige ou à l'ivoire, dans la zone réactive 143a de la deuxième zone de détection 143a, uniquement avec la bandelette de test 140 de l'invention. Cela indique la présence de GHB dans l'échantillon de boisson ayant migré à travers la zone de réaction 142a de la première zone de détection 142. Cette observation démontre l'efficacité de la bandelette de test 140, conçue pour détecter le GHB, même dans les cas où il est initialement présent sous forme de son précurseur, le GBL, dans la boisson, grâce à une synergie entre les réactifs spécifiques et les zones de détection. Dispositif portable de test pour la détection simultanée de plusieurs substances psychoactives susceptibles d'être contenues dans un échantillon de boisson, comportant : - un boîtier (100) incluant une chambre interne conçue pour loger au moins une bandelette de test (140) ; - ladite bandelette de test (140) comprenant, en communication fluidique et dans l’ordre suivant : -- un tampon d’échantillon (141) destiné à être imprégné d’un échantillon de boisson à tester ; -- une première zone de détection (142) conçue pour la détection d’une substance psychoactive d’un premier type ; -- une deuxième zone de détection (143) conçue pour la détection d’une substance psychoactive d’un deuxième type ; - ledit boîtier (100) présentant une partie arrière (104) et une partie avant amovible (103) configurées pour être sécables l'une de l'autre le long d'une zone d'amorce de rupture (105) ; et pour permettre, une fois la partie avant amovible (103) séparée, à au moins une portion du tampon d'échantillon (141) situé sur la bandelette de test (140), qui reste dans la partie arrière (104), de dépasser de cette partie arrière (104) pour faciliter son imprégnation par l'échantillon de la boisson à tester. Dispositif portable selon la revendication 1, caractérisé en ce que la première zone de détection (142) est configurée pour catalyser la conversion d'un précurseur de la substance psychoactive du deuxième type en cette substance psychoactive de deuxième type, cette conversion permet à la substance psychoactive du deuxième type, une fois produite, d'être détectée par la deuxième zone de détection (143). Dispositif portable selon la revendication 2, caractérisé en ce que : - la substance psychoactive du deuxième type détectable dans la deuxième zone de détection (143) est le gamma-hydroxybutyrate (GHB) ; - le précurseur du GHB est sélectionné parmi le gamma-butyrolactone (GBL), l’acétate d'acide 4-hydroxybutyrique, et leurs combinaisons ; - la première zone de détection (142), suite à l'absorption de l'échantillon de la boisson, crée un milieu acide propice à la conversion dudit précurseur du GHB en GHB, ce qui permet ainsi à ce dernier d’être détecté dans la deuxième zone de détection (143). Dispositif portable selon l’une des revendication 1 à 3, caractérisé en ce que la substance psychoactive d’un premier type est une substance psychoactive ayant une ou plusieurs amines basiques. Dispositif portable selon l’une des revendications 1 à 4, caractérisé en ce que : - la première zone de détection (142) comprend une zone de réaction (142a) dans laquelle un indicateur coloré est immobilisé, à l’état sec ; - l’indicateur coloré est un réactif de Madelin modifié composé de vanadate d’ammonium et d’acide sulfurique dilué avec de l’eau à une concentration de 75% à 88% en poids ; et - l'indicateur coloré subit un changement de couleur visible à l’œil nu en présence d'une ou plusieurs substances psychoactives contenant une ou plusieurs amines basiques. Dispositif portable selon l’une des revendications 1 à 5, caractérisé en ce que la première zone de détection (142) est réalisée en fibre constituée de fibre de verre et/ou de fibre de polyester. Dispositif portable selon l’une des revendications 1 à 6, caractérisé en ce que le ou les composés chimiques contenant une ou plusieurs amines basiques sont sélectionnés dans le groupe constitué par la kétamine, la cocaïne, l'amphétamine, la méthamphétamine, la 3,4-méthylènedioxy-méthamphétamine (MDMA), la méthylènedioxyamphétamine (MDA), la 2,5-diméthoxy-4-éthoxyamphétamine (MEM), la morphine, la diéthyllysergamide (LSD) et La scopolamine. Dispositif portable selon l’une des revendications 1 à 7, caractérisé en ce que la substance psychoactive du deuxième type est le gamma-hydroxybutyrate (GHB). Dispositif portable selon l’une des revendications 1 à 8, caractérisé en ce que la deuxième zone de détection (143) comprend une zone de réaction (143a) dans laquelle un chimiosenseur chromo-fluorogène est immobilisé, lequel chimiosenseur chromo-fluorogène est conçu pour produire une réponse colorimétrique visible à l'œil nu et une réponse fluorimétrique en présence de GHB. Dispositif de détection selon la revendication 9, caractérisé en ce que le chimiosenseur chromo-fluorogène est sélectionné parmi les dérivés de borodipyrométhène (BODIPY). Dispositif portable selon la revendication 9 ou 10, caractérisé en ce que le chimiosenseur chromo-fluorogène est un complexe métallique borodipyrométhène (BODIPY)-fer(III) ayant la formule chimique [Chem.1] suivante: [Chem.1] : Dispositif portable selon la revendication 9 ou 10, caractérisé en ce que le chimiosenseur chromo-fluorogène est un complexe métallique de Cu(II) ayant la formule chimique [Chem.2] suivante : [Chem.2] Dispositif portable selon l’une des revendications 1 à 12, caractérisé en ce que la chambre interne du boîtier (100) loge en outre une bandelette d’essai immuno-chromatographique à flux latéral (160), ladite bandelette d’essai (160), disposée à côté et parallèlement à la bandelette de test (140), étant configurée pour la détection d’une substance psychoactive de troisième type, désignée ci-après comme la substance psychotrope cible, potentiellement présente dans l’échantillon de boisson, et comprend, en communication fluidique et dans l'ordre suivant : - une zone de contact (161) prévue pour être imprégnée d’un échantillon de la boisson à tester ; - une membrane de conjugaison (162) où est immobilisé un conjugué d’anticorps mobile, lequel conjugué d’anticorps est composé d'un anticorps conçu pour se lier spécifiquement à la substance psychotrope cible et d'un marqueur ; - une membrane de détection de signal (163) comprenant : -- une zone de capture (163a) ayant un agent de capture immobilisé, conçu pour se lier de manière sélective à l'anticorps contenu dans le conjugué d’anticorps, sans interagir avec la substance psychotrope cible ; -- une zone de contrôle (163b) ayant un anticorps de contrôle immobilisé, ledit anticorps de contrôle étant apte à se lier spécifiquement à l'anticorps contenu dans le conjugué d’anticorps ; et en ce que la séparation de la partie avant amovible (103) du boîtier (100) permet également à au moins une partie de la zone de contact (161) située sur la bandelette d’essai (160), qui reste dans la partie arrière (103), de dépasser de cette partie arrière (103) pour faciliter son imprégnation par l'échantillon de la boisson à tester. Dispositif portable selon la revendication 13, caractérisé en ce que la substance psychotrope cible, pouvant être détectée dans l'échantillon de boisson, est choisie parmi les substances psychotropes appartenant aux catégories des benzodiazépines, des opioïdes et des stimulants. Dispositif portable selon la revendication 13 ou 14, caractérisé en ce que l’anticorps contenu dans le conjugué d’anticorps est un anticorps monoclonal de souris. Dispositif portable selon l’une des revendications 13 à 15, caractérisé en ce que le marqueur du conjugué d’anticorps est constitué de nanoparticules d’or colloïdal. Dispositif portable selon l'une des revendications 13 à 16, caractérisé en ce que l’agent de capture, immobilisé dans la zone de capture (163a), comprend soit la substance psychotrope ciblée, soit un analogue approprié de cette substance, l’agent de capture étant lié à un agent de liaison sélectionné parmi l'albumine de sérum bovin (BSA) et l'albumine de sérum humain (HSA). Dispositif portable selon l’une des revendications 13 à 17, caractérisé en ce que l’agent de contrôle immobilisé dans la zone de contrôle (163b) comprend un anticorps conçu pour se lier de manière spécifique à l'anticorps présent dans le conjugué d'anticorps. Dispositif portable selon l’une des revendications 13 à 18, caractérisé en ce que l’anticorps contenu dans le conjugué d’anticorps est un anticorps monoclonal de souris ; le marqueur du conjugué d’anticorps est constitué de nanoparticules d’or colloïdal ; et l’agent de contrôle immobilisé dans la zone de contrôle (163b) comprend un anticorps IgG de chèvre ou de lapin anti-souris. Dispositif portable selon l’une des revendications 13 à 19, caractérisé en ce que la substance psychotrope ciblée appartenant à la catégorie des benzodiazépines peut être sélectionnée parmi l'adinazolam, l'alprazolam, le bentazépam, le bretazenil, le bromazépam, le brotizolam, le camézépam, le chlordiazépoxide, le cinazépam, le cinolazépam, le clobazam, le clonazépam, le clorazépate, le clotiazépam, le diazépam, le flunitrazépam, le lorazépam, le lormétazépam, le médozépam, le midazolam, le nitrazépam, l'oxazépam, le temazépam, le tiéprazolam et leurs combinaison. Dispositif portable selon l’une des revendications 13 à 20, caractérisé en ce que la substance psychotrope ciblée est la morphine. Dispositif portable selon l’une des revendications 13 à 21, caractérisé en ce que la substance psychotrope ciblée est le fentanyl. Dispositif portable selon l’une des revendications 13 à 22, caractérisé en ce que la substance psychotrope ciblée est l’amphétamine et/ou la méthamphétamine. Utilisation du dispositif portable selon l’une des revendications 1 à 23 pour la détection simultanée de substances psychoactives dans un échantillon de boisson.