Brevet FR3158515A1 — publié le 20250725

TITRE : PRODUCTION DE VECTEURS TOXIQUES La présente invention concerne généralement le domaine de la médecine. Plus particulièrement, elle concerne la production de vecteurs toxiques, ces vecteurs toxiques en tant que tel et leur utilisation pour la mise en œuvre de thérapies cellulaires efficaces et sûres. (Pas de figure) PRODUCTION DE VECTEURS TOXIQUES DOMAINE DE L’INVENTION La présente invention concerne généralement le domaine de la médecine. Plus particulièrement, elle concerne la production de vecteurs toxiques, ces vecteurs toxiques en tant que tel et leur utilisation pour la mise en œuvre de thérapies cellulaires efficaces et sûres. ART ANTÉRIEUR Depuis plus de vingt-cinq ans, des vecteurs lentiviraux basés sur le génome du VIH-1 sont produits et utilisés pour le transfert de gène efficace en cellules de mammifères in vitro et in vivo . Le génome de ces vecteurs et les procédés de production ont été optimisés afin d’améliorer leur efficacité et leur sécurité dans l’optique d’une utilisation en médecine humaine. Profitant de l’essor important de la thérapie génique, les vecteurs lentiviraux sont impliqués dans de nombreux essais cliniques malgré leurs limites et les effets secondaires dus notamment à leur intégration préférentielle dans les régions transcrites du génome de la cellule génétiquement modifiée. Les vecteurs lentiviraux ont la capacité de transduire des cellules prolifératives ou quiescentes ainsi que d’intégrer un transgène dans le génome de leur hôte. Leur utilisation en ingénierie cellulaire offre ainsi des possibilités d’applications thérapeutiques très variées. L’une d’elles consiste en l’élimination de la cellule transduite, une stratégie appelée « thérapie génique suicide », envisagée pour aborder des situations médicales diverses (traitement anti-tumoral, sécurisation de cellules greffées, etc. ). Toutefois, en consultant les bases de données bibliographiques, rare sont les publications relatant l’usage de vecteurs lentiviraux pour le transfert d’un gène cytotoxique. En effet, ces applications sont confrontées à deux verrous technologiques majeurs : (1) produire des vecteurs lentiviraux véhiculant un transgène cytotoxique et (2) limiter l’expression du transgène aux cellules ciblées. Pour résoudre ces problèmes, de nombreux travaux ont été entrepris depuis plusieurs années et seules des solutions partielles ont été apportées, notamment pour tenter d’obtenir une expression tissu-spécifique du transgène. Dans ce but, au moins deux grandes stratégies sont envisagées pour restreindre, soit l’entrée du vecteur, soit l’expression du transgène, dans les seules cellules cibles. Les lentivirus entrent dans les cellules par interaction entre une glycoprotéine d’enveloppe virale et une protéine membranaire cellulaire. Ainsi, le choix parmi différentes glycoprotéines d’enveloppe permet le pseudotypage des particules afin d’exploiter la diversité des affinités entre enveloppes virales et récepteurs cellulaires pour moduler le tropisme des vecteurs lentiviraux. Cependant, les méthodes actuelles d’ingénierie des enveloppes lentivirales ne permettent pas une restriction suffisante du tropisme des particules de vecteurs pour envisager un transfert de gène ciblé, in vivo , par cette seule voie (Li, M., Husic, N., Lin, Y. & Snider, B. J. J. Vis. Exp . JoVE e4031 (2012) ; Ebrahimabadi, S., Shahbazi, M., Akbari, M., Golalipour, M. & Farazmandfar, T. J. Gene Med. 21 , e3095 (2019) ; Gutierrez-Guerrero, A., Cosset, F.-L. & Verhoeyen, E. Viruses 12 , 1016 (2020)). Aussi une restriction transcriptionnelle est-elle le plus souvent envisagée pour assurer l’expression tissu-spécifique du transgène. Ce contrôle transcriptionnel de l’expression du transgène, peut être obtenu par le clonage d’un promoteur tissu-spécifique dans un vecteur d’expression ou en ciblant l’intégration du transgène sous un promoteur cellulaire spécifiquement actif dans les cellules cibles. L’intégration ciblée du transgène dans le génome de la cellule cible, est principalement développée ex vivo par le biais de la transfection de complexes nucléoprotéiques (CRISPR/Cas9 et ARN guide) et d’un ADN donneur d’intérêt. Pour le transfert de gènes suicides, la majorité des gènes cytotoxiques utilisés aujourd’hui, codent une protéine dont la toxicité est conditionnée à la présence d’une molécule effectrice (Ganciclovir pour la thymidine kinase du Virus de l’Herpès Simplex, 5-fluorocytosine pour la cytosine déaminase, dimérisateur chimique pour la Caspase-9 inductible, etc. ). Ces systèmes enzyme/pro-drogue permettent de produire des vecteurs lentiviraux véhiculant ces gènes sans toxicité pour les cellules productrices, et de contrôler le déclenchement de la mort cellulaire. Cependant, certaines de ces enzymes, d’origine virale, bactérienne ou contenant des épitopes chimériques, sont potentiellement immunogènes (Berger, C. Blood 107 , 2294–2302 (2006)), et la pro-drogue n’est pas toujours approuvée pour une utilisation clinique. Par ailleurs, l’utilisation de transgènes codant une protéine avec une toxicité directe est également explorée (toxine diphtérique, entérotoxines, caspase activée, etc. ) mais la transgénèse passe alors majoritairement par des vecteurs non lentiviraux (Pahle, J. et al. Cancers 13 , 4393 (2021) ; Chang, A., Ling, J., Ye, H., Zhao, H. & Zhuo, X. Bioengineered 12 , 6572–6578 (2021) ; Abbaspour, A., Esmaeilzadeh, A. & Sharafi, A. 3 Biotech 11 , 140 (2021)). En effet, la production de vecteurs lentiviraux exprimant ces transgènes pose un problème technique du fait de leur toxicité sur les cellules où sont produit les vecteurs, ce qui réduit drastiquement les titres de particules recombinantes. La procédure de production de vecteurs lentiviraux repose en effet sur la co-transfection en cellules HEK 293T de plasmides exprimant : (1) le génome lentiviral véhiculant le transgène, (2) une protéine d’enveloppe et (3) les protéines de structures et les enzymes du VIH-1 nécessaires à la production de particules lentivirales recombinantes non réplicatives (gag, pol et rev). Dans les vecteurs lentiviraux, le transgène est classiquement cloné sous le contrôle d’un promoteur interne. Aussi, au cours du processus de production, le transgène est fortement exprimé et ce, malgré les modifications des séquences lentivirales et l’utilisation de promoteurs internes inductibles ou tissus spécifiques (Pourzadegan, F. et al. Cancer Gene Ther . 23 , 7–12 (2016) ; Brandtner, E. M. et al. J. Gene Med. 10 , 113–122 (2008)). En effet, les plasmides utilisés pour la production de vecteurs lentiviraux recombinants ont une structure circulaire et contiennent au moins un promoteur fort, contrôlant la transcription du génome vecteur qui sera encapsidé dans les particules VIH recombinantes. De plus, il a été récemment montré que les plasmides contiennent également d’autres promoteurs, cryptiques, qui peuvent être à l’origine de départs de transcription sur l’un ou l’autre des deux brins d’ADN du plasmide (Muerdter, F. et al. Nat. Methods 15 , 141–149 (2018) ; Lemp, N. A., Hiraoka, K., Kasahara, N. & Logg, C. R. Nucleic Acids Res. 40 , 7280–7290 (2012)). Ainsi, dans le cas des cellules d’empaquetage, l’expression basale d’un transgène cytotoxique réduit fortement le titre des vecteurs obtenus (Maunder, H. E. et al. Nat. Commun. 8 , 14834 (2017)). Dans certains cas, l’utilisation d’une lignée de production résistante au gène toxique est possible (Lange, M. J., Lyddon, T. D. & Johnson, M. C. Sci . Rep. 9 , 8985 (2019) ; Li, Y. et al. Cancer Res . 2002 May 1;62(9):2576-82), mais cela ne constitue pas une solution universelle. BREF APERÇU DE L’INVENTION Face à ce défi majeur de pouvoir promettre une thérapie cellulaire in vivo sûre et efficace, les inventeurs ont construit un génome vecteur innovant permettant, malgré l’expression d’un transgène suicide ou toxique, de produire des titres élevés de vecteurs lentiviraux véhiculant ledit transgène directement cytotoxique. Ainsi, un premier but de l’invention est de mettre à disposition du corps médical ce génome vecteur ainsi que le plasmide le comprenant pour produire un vecteur lentiviral. De facto , un second but de l’invention correspond à proposer l’utilisation du génome vecteur de l’invention et du plasmide le comprenant pour mettre en œuvre une méthode de production du vecteur lentiviral de l’invention. Un autre but de l’invention est de mettre à disposition l’utilisation dudit vecteur lentiviral pour transduire une cellule eucaryote, laquelle est destinée à être utilisée dans une thérapie cellulaire in vivo sûre et efficace. Aussi, un autre but de l’invention est de proposer une cellule eucaryote transduite et son utilisation en thérapie cellulaire. DESCRIPTION DÉTAILLÉE Dans son aspect le plus général, l’invention a pour objet un génome vecteur comprenant un génome lentiviral dans lequel a été introduit une cassette d’expression comprenant un promoteur en amont d’un transgène toxique ou suicide codant une protéine Noxa ( la protéine sauvage ou un de ses mutants, notamment le mutant S13A ), ledit transgène toxique ou suicide codant une protéine Noxa étant choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 1 ou dont l’acide nucléique code une protéine une protéine Noxa dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 2. Par « génome vecteur », on entend une séquence d’acides nucléiques comprenant à la fois : l’acide nucléique comprenant l’information génétique (= génome lentiviral) nécessaire à la production d’un vecteur lentiviral également appelé particule (lenti-)virale, ledit vecteur lentiviral ou ladite particule (lenti-)virale comprenant ledit génome vecteur encapsidé et enveloppé, lequel est efficace pour s’introduire dans la cellule et est non réplicatif ; et l’acide nucléique comprenant l’information génétique d’une cassette d’expression comprenant un promoteur en amont d’un transgène toxique ou suicide, l’acide nucléique codant ledit transgène toxique ou suicide pouvant comprendre à son extrémité 3’ une séquence d’acides nucléiques permettant la transcription d’une queue polyA, ladite cassette d’expression pouvant être introduite dans ledit génome lentiviral de telle sorte que sa transcription soit inversée par rapport à celle dudit génome lentiviral. Par « génome lentiviral », on entend comme mentionné ci-dessus un acide nucléique portant l’information génétique nécessaire à la production d’un vecteur lentiviral également appelé particule (lenti-)virale, ledit vecteur lentiviral ou ladite particule (lenti-)virale comprenant ledit génome vecteur encapsidé et enveloppé. Ce vecteur lentiviral est par ailleurs efficace pour s’introduire dans la cellule, il est non réplicatif, et il conduit à l’intégration (ciblée ou non) dudit génome vecteur dans le génome d’une cellule infectée. Dans certains cas, la particule lentivirale contiendra une intégrase mutante (D64V) ce qui aboutira à un provirus (ADN vecteur post reverse transcription) non-intégratif dans le génome de la cellule transduite. En conséquence, le génome de ce vecteur sera sous forme d’épisome dans le noyau cellulaire. Classiquement, la structure de ce génome lentiviral après reverse transcription comprend : Les séquences cis du génome lentiviral HIV, soit deux Long Terminal Repeats (LTR) flanquant les extrémités du génome vecteur avec les régions U3, R et U5 mais ou la région U3 est mutante (ΔU3), dépourvue de sa séquence enhancer et donc sans activité promoteur. Les vecteurs lentiviraux avec ΔU3 dans les LTR sont appelés « self- inactivating » puisqu’ils ne peuvent être transcrits par un virus HIV sauvage. Le LTR en 5’ du génome est suivi d’une séquence « psi » pour l’encapsidation du génome ARN du vecteur, d’une séquence Rev Responsive element (RRE) pour l’export du génome vecteur ARN, des séquences, Central Polypurine Tract « cppt » et Central Termination Sequence « cts », pour la formation du triplex ADN central lors de la reverse transcription et d’un LTR 3’. Outre les séquences cis du virus, ces vecteurs contiennent une cassette d’expression, placée entre les deux LTR. Par « cassette d’expression », on entend comme mentionné ci-dessus un acide nucléique comprenant un promoteur inductible en amont d’un transgène toxique ou suicide, l’acide nucléique codant ledit transgène toxique ou suicide pouvant comprendre à son extrémité 3’ une séquence d’acides nucléiques permettant la transcription d’une queue polyA, ladite cassette d’expression ayant été introduite dans ledit génome lentiviral de telle sorte que sa transcription soit inversée par rapport à celle dudit génome lentiviral. Par « promoteur », on entend un acide nucléique situé en amont d’un gène (ou transgène) et qui en contrôle son expression, notamment en régulant sa transcription laquelle peut être constitutive ou induite. Il est alors fait référence à un promoteur constitutif, ou à un promoteur inductible ou tissus spécifique. Par « promoteur constitutif », il est fait référence à un acide nucléique situé en amont d’un gène (ou transgène) dont l’expression qu’il contrôle est constante quel que soit son environnement, c’est-à-dire qu’il soit dans l’environnement cellulaire où sont produit les particules recombinantes de vecteurs ou dans un autre environnement cellulaire au phénotype distinct. Dans l’invention, ces derniers peuvent être : le SV40 (ou pSV40), le CMV (ou pCMV), le UbC (ou pUbC), le EF1-a core (ou pEF1-a core), le EF1-a long (ou pEF1-a long), le hPGK (ou phPGK), le CAGG (ou pCAGG), le RSV (ou pRSV) ou le SFFV (ou pSFFV). Par « promoteur inductible », on entend un acide nucléique situé en amont d’un gène (ou transgène) dont l’expression qu’il contrôle n’est pas constitutive et est uniquement induite après son activation en réponse au bon stimulus. Dans l’invention, ces derniers peuvent être : le 2xAARE YB_TATA , le 2xAARE TK , le 4xSRE YB_TATA , le 9xHRE YB_TATA , le GRP78 YB_TATA ou le miniCHAC1 YB_TATA . Les promoteurs le 2xAARE YB_TATA , le 2xAARE TK , et miniCHAC1 YB_TATA sont activés par un inducteur induisant l’expression du facteur de transcription ATF4. Le promoteur GRP78 YB_TATA est activé par un inducteur induisant le facteur de transcription ATF6. Le promoteur 4xSRE YB_TATA est induit par les hormones stéroïdiennes et plus précisément par la dexaméthasone. Le promoteur 9xHRE YB_TATA est induit par une hypoxie. De manière intéressante, les promoteurs inductibles mentionnés précédemment sont tributaires de l’expression de facteur de transcriptions cellulaires peu ou non exprimés en condition de production de vecteur dans les cellules HEK 293T. Par « promoteur tissus-spécifique », on entend un acide nucléique situé en amont d’un gène (ou transgène) dont l’expression qu’il contrôle n’est pas effective dans l’environnement cellulaire où sont produit les particules recombinantes de vecteurs, mais est activé dans un autre environnement cellulaire au phénotype distinct auquel est sensible ledit promoteur tissus-spécifique. En réponse à cet autre environnement, ledit promoteur tissus-spécifique va s’activer. Par exemple, il peut s’agir dans l’invention du promoteur du miR223 qui est spécifiquement induit dans les cellules myéloïdes ce que n’est pas une cellule HEK-293T. Par « transgène toxique ou suicide », on entend un acide nucléique situé en aval dudit promoteur, en particulier constitutif, inductible ou tissus-spécifique, et qui code pour une protéine toxique, cytotoxique ou suicide dans la cellule génétiquement modifiée. C’est-à-dire qu’après l’activation dudit promoteur contrôlant l’expression dudit transgène toxique ou suicide, le produit ( i.e. la protéine toxique ou suicide) issue de la transcription et de la traduction de cet acide nucléique provoque (conduit à) la mort cellulaire de la cellule l’exprimant. Dans l’invention, ce dernier correspond à la protéine Noxa dont l’acide nucléique l’encodant est choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 1 ou dont l’acide nucléique code une protéine une protéine Noxa dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 2. Il s’agit là d’une protéine toxique ou suicide non sécrétée, i.e. dont l’expression après activation dudit promoteur en amont de l’acide nucléique le codant ne se retrouve pas dans le milieu extracellulaire et n’entraîne donc que la mort cellulaire de la cellule les exprimant. Étonnamment, alors que la protéine Noxa est un transgène toxique ou suicide, c’est-à-dire que son expression induit la mort de la cellule qui l’exprime, son expression dans le contexte de production du vecteur lentiviral de l’invention n’interfère pas avec la survie de celle-ci. De hauts titres de vecteurs lentiviraux peuvent donc être obtenus en mettant en œuvre une cassette d’expression permettant l’expression de la protéine Noxa pendant la production de particules recombinantes de vecteurs viraux et ainsi satisfaire l’attente du corps médical de pouvoir en disposer à foison. Par « % d’identité », on entend le pourcentage déterminé par comparaison directe de deux séquences d’oligonucléotidiques (séquence d’acides nucléiques), en déterminant le nombre de nucléotides identiques entre les deux séquences, puis en le divisant par le nombre de nucléotides de la séquence la plus longue des deux, et en multipliant le résultat par 100. Par « ayant au moins 80% d’identité » on entend donc que le pourcentage d’identité susmentionné est d’au moins 80%, d’au moins 81%, d’au moins 82%, d’au moins 83%, d’au moins 84%, d’au moins 85%, d’au moins 86%, d’au moins 87%, d’au moins 88%, d’au moins 89%, d’au moins 90%, d’au moins 91%, d’au moins 92%, d’au moins 93%, d’au moins 94%, d’au moins 95%, d’au moins 96%, d’au moins 97%, d’au moins 98%, d’au moins 99%, ou est de 100%. A cet égard, il convient de noter que cette définition s’applique à tous les modes de réalisation de l’invention y compris lorsqu’il s’agit d’une comparaison directe de deux séquences de polypeptides (séquence d’acides aminés). Par ailleurs, il est entendu que les séquences ayant au moins 80% d’identité avec une séquence de référence conservent les mêmes propriétés et les mêmes fonctions, voire celles-ci sont améliorées. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, ledit transgène toxique ou suicide codant une protéine Noxa étant choisi parmi les séquences ayant au moins 90% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 1 ou dont l’acide nucléique code une protéine une protéine Noxa dont la séquence d’acides aminés est au moins 90% identique à la séquence SEQ ID NO : 2. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, ledit transgène toxique ou suicide codant une protéine Noxa ayant une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 1 ou dont l’acide nucléique code une protéine Noxa dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 2. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur est un promoteur constitutif. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur est un promoteur constitutif notamment choisi parmi : le SV40 dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 3 ; le CMV dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 ; le UbC dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 5 ; le EF1-a core dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 6 ; le EF1-a long dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 7 ; le hPGK dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 8 ; le CAGG dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 9 ; le RSV dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 10 ; et le SFFV dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 11. En particulier, l’invention a également pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur est un promoteur constitutif choisi parmi : le SV40, le CMV, le UbC, le EF1-a core, le EF1-a long, le hPGK, le CAGG, le RSV et le SFFV dont l’acide nucléique a respectivement une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10 et 11. Avantageusement, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur est un promoteur constitutif choisi parmi : le SV40, le CMV, le UbC, le EF1-a core, le EF1-a long, le hPGK, le CAGG, le RSV et le SFFV dont l’acide nucléique correspond respectivement à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10 et 11. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur est un promoteur inductible ou tissus spécifique. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur est un promoteur inductible ou tissus spécifique notamment choisi parmi : le 2xAARE YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 12 ; le 2xAARE TK dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 13 ; le 4xSRE YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 14 ; le 9xHRE YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 17 ; le GRP78 YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 16 ; le promoteur du miR223 dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 17 ; et le miniCHAC1 YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 18. En particulier, l’invention a également pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur est un promoteur inductible ou tissus spécifique choisi parmi : le 2xAARE YB_TATA , le 2xAARE TK , le 4xSRE YB_TATA , le 9xHRE YB_TATA , le GRP78 YB_TATA et le miniCHAC1 YB_TATA dont l’acide nucléique a respectivement une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 12, 13, 14, 15, 16, 18 et 18. Avantageusement, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur est un promoteur constitutif choisi parmi : le 2xAARE YB_TATA , le 2xAARE TK , le 4xSRE YB_TATA , le 9xHRE YB_TATA , le GRP78 YB_TATA et le miniCHAC1 YB_TATA dont l’acide nucléique correspond respectivement à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 12, 13, 14, 15, 16, 18 et 18. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit promoteur est un promoteur constitutif notamment choisi parmi : le SV40 dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 3 ; le CMV dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 ; le UbC dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 5 ; le EF1-a core dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 6 ; le EF1-a long dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 7 ; le hPGK dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 8 ; le CAGG dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 9 ; le RSV dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 10 ; et le SFFV dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 11, ou dans lequel ledit promoteur est un promoteur inductible ou tissus spécifique notamment choisi parmi : le 2xAARE YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 12 ; le 2xAARE TK dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 13 ; le 4xSRE YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 14 ; le 9xHRE YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 17 ; le GRP78 YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 16 ; le promoteur du miR223 dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 17 ; et le miniCHAC1 YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 18. Au vu de ce qui précède, on comprend que l’invention met en œuvre le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression est choisie parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 19 à 34. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 19 à 34. Autrement dit, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression est la séquence SEQ ID NO : 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31, 32, 33 ou 34 (voir Tableau 1). SEQ ID NO : CASSETTE D’EXPRESSION 19 SV40-Noxa 20 CMV-Noxa 21 UbC-Noxa 22 EF1-a core-Noxa 23 EF1-a long-Noxa 24 hPGK-Noxa 25 CAGG-Noxa 26 RSV-Noxa 27 SFFV-Noxa 28 2xAARE YB_TATA -Noxa 29 2xAARE TK -Noxa 30 4xSRE YB_TATA -Noxa 31 9xHRE YB_TATA -Noxa 32 GRP78 YB_TATA -Noxa 33 miR223-Noxa 34 miniCHAC1 YB_TATA -Noxa Tableau 1. Liste des cassettes d’expression Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome lentiviral dans lequel a été introduit ladite cassette d’expression est un Self- inactivating Lentivirus (SIN) ou un Respiratory syncytial virus (RSV). Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome lentiviral dans lequel a été introduit ladite cassette d’expression est un Self- inactivating Lentivirus (SIN). En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome lentiviral dans lequel a été introduit ladite cassette d’expression est un Self- inactivating Lentivirus (SIN) dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 35. En particulier, l’invention a également pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome lentiviral dans lequel a été introduit ladite cassette d’expression est un Self- inactivating Lentivirus (SIN) dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 35. A noter que l’insertion de ladite cassette d’expression dans ledit Self- inactivating Lentivirus (SIN) de séquence SEQ ID NO : 35 peut être ou est réalisée au niveau des nucléotides 2 229 et 2 230 de cette SEQ ID NO : 35. C’est-à-dire que ladite cassette d’expression se situe dans ce cas entre les séquences SEQ ID NOs : 36 et 37. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome lentiviral dans lequel a été introduit ladite cassette d’expression est un Respiratory syncytial virus (RSV). En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome lentiviral dans lequel a été introduit ladite cassette d’expression est un Respiratory syncytial virus (RSV) dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 38. En particulier, l’invention a également pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome lentiviral dans lequel a été introduit ladite cassette d’expression est un Respiratory syncytial virus (RSV) dont l’acide nucléique a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 38. A noter que l’insertion de ladite cassette d’expression dans ledit Respiratory syncytial virus (RSV) de séquence SEQ ID NO : 38 peut être ou est réalisée au niveau des nucléotides 1 737 et 1 738 de cette SEQ ID NO : 38. C’est-à-dire que ladite cassette d’expression se situe dans ce cas entre les séquences SEQ ID NOs : 39 et 40. Au vu de ce qui précède, on comprend que l’invention met en œuvre le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 41 à 72. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 41 à 72. Autrement dit, l’invention a également pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est la séquence SEQ ID NO : 41, 42, 43, 44, 45, 46, 47, 48, 49, 50, 51, 52, 53, 54, 55, 56, 57, 58, 59, 60, 61, 62, 63, 64, 65, 66, 67, 68, 69, 70, 71 ou 72 (voir Tableau 2). SEQ ID NO : GENOME VECTEUR (SIN) SEQ ID NO : GENOME VECTEUR (RSV) 41 LV G2 (SIN)-SV40-Noxa 57 LV G3 (RSV)-SV40-Noxa 42 LV G2 (SIN)-CMV-Noxa 58 LV G3 (RSV)-CMV-Noxa 43 LV G2 (SIN)-UbC-Noxa 59 LV G3 (RSV)-UbC-Noxa 44 LV G2 (SIN)-EF1-a core-Noxa 60 LV G3 (RSV)-EF1-a core-Noxa 45 LV G2 (SIN)-EF1-a long-Noxa 61 LV G3 (RSV)-EF1-a long-Noxa 46 LV G2 (SIN)-hPGK-Noxa 62 LV G3 (RSV)-hPGK-Noxa 47 LV G2 (SIN)-CAGG-Noxa 63 LV G3 (RSV)-CAGG-Noxa 48 LV G2 (SIN)-RSV-Noxa 64 LV G3 (RSV)-RSV-Noxa 49 LV G2 (SIN)-SFFV-Noxa 65 LV G3 (RSV)-SFFV-Noxa 50 LV G2 (SIN)-2xAARE YB_TATA -Noxa 66 LV G3 (RSV)-2xAARE YB_TATA -Noxa 51 LV G2 (SIN)-2xAARE TK -Noxa 67 LV G3 (RSV)-2xAARE TK -Noxa 52 LV G2 (SIN)-4xSRE YB_TATA -Noxa 68 LV G3 (RSV)-4xSRE YB_TATA -Noxa 53 LV G2 (SIN)-9xHRE YB_TATA -Noxa 69 LV G3 (RSV)-9xHRE YB_TATA -Noxa 54 LV G2 (SIN)-GRP78 YB_TATA -Noxa 70 LV G3 (RSV)-GRP78 YB_TATA -Noxa 55 LV G2 (SIN)-miR223-Noxa 71 LV G3 (RSV)-miR223-Noxa 56 LV G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -Noxa 72 LV G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -Noxa Tableau 2. Liste des génomes vecteurs Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression comprend en outre une séquence codante ou non codante ayant des propriétés régulatrices au niveau post -transcriptionnel, ladite séquence codante ou non codante ayant des propriétés régulatrices au niveau post -transcriptionnel étant située à l’extrémité 5’ ( en amont ) dudit transgène toxique ou suicide codant une protéine Noxa et étant en particulier choisie parmi les séquences ayant au moins 90% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 73 à 99. L’expression « séquence codante ou non codante ayant des propriétés régulatrices au niveau post -transcriptionnel » désigne une séquence d’acides nucléiques qui peut être soit codante (ayant la capacité de coder des protéines), soit non codante (ne codant pas pour des protéines), et qui possède des propriétés régulatrices agissant après le processus de transcription. C’est-à-dire qu’après la production d’un ARNm, la présence de ladite séquence d’acides nucléiques en son sein inhibe dans certaines conditions (par exemple, des conditions physiologiques normales) la traduction dudit ARNm et donc, la production de la protéine que l’ARNm code. Dans d’autres conditions (par exemple, des conditions de stress cellulaire), la présence de ladite séquence d’acides nucléiques au sein de l’ARNm n’a plus son rôle inhibiteur de la traduction. Celle-ci se met alors en place et la protéine codée par ledit ARNm est produite. Dans l’invention, ladite séquence codante ou non codante ayant des propriétés régulatrices au niveau post -transcriptionnel est située, dans une cassette d’expression, entre un transgène d’intérêt et un promoteur, ledit transgène d’intérêt étant situé en aval dudit promoteur. Autrement dit, ladite séquence codante ou non codante ayant des propriétés régulatrices au niveau post -transcriptionnel est située à l’extrémité 5’ (en amont) dudit transgène d’intérêt. Cet agencement de ladite cassette d’expression (5’-Promoteur_ Séquence codante ou non codante ayant des propriétés régulatrices au niveau post -transcriptionnel_Transgène d’intérêt-3’) permet en cas de transcription non désirée d’un ARNm à partir dudit promoteur d’en inhiber la traduction à l’aide de ladite séquence codante ou non codante ayant des propriétés régulatrices au niveau post -transcriptionnel et donc, d’inhiber la production dudit transgène d’intérêt. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite séquence codante ou non codante ayant des propriétés régulatrices au niveau post -transcriptionnel située à l’extrémité 5’ ( en amont ) dudit transgène toxique ou suicide codant une protéine Noxa est choisie parmi les séquences ayant au moins 90% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 73 à 99. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite séquence codante ou non codante ayant des propriétés régulatrices au niveau post -transcriptionnel située à l’extrémité 5’ ( en amont ) dudit transgène toxique ou suicide codant une protéine Noxa est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 73 à 99. Autrement dit, l’invention a également pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite séquence codante ou non codante ayant des propriétés régulatrices au niveau post -transcriptionnel est la séquence SEQ ID NO : 73, 74, 75, 76, 77, 78, 79, 80, 81, 82, 83, 84, 85, 86, 87, 88, 89, 90, 91, 92, 93, 94, 95, 96, 97, 98 ou 99 (voir Tableau 3). 5’UTR SEQ ID NO : 5’UTR SEQ ID NO : ATF4 73 HOXB2 87 AASS 74 IFDR1 88 ATF5 75 JUN 89 AZIN1 76 MIEF1 90 BACE1 77 NDST1 91 CAT1 (SLC7A1) 78 PCNXL4 92 C/EBPa 79 PPP1R15B 93 CHOP 80 PTP4A1 94 CITED2 81 SELK 95 CDK16 82 TIE2 96 CPT1C 83 TRB3 97 DEDD2 84 UCP2 98 DIAPH1 85 VEGFa 99 GADD34 86 Tableau 3. Liste des séquences 5’UTR ayant des propriétés régulatrices au niveau post -transcriptionnel Avantageusement, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite séquence codante ou non codante ayant des propriétés régulatrices au niveau post -transcriptionnel est la séquence 5’UTR d’ATF4 de séquence SEQ ID NO : 73. Au vu de ce qui précède, on comprend que l’invention met en œuvre le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression est choisie parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 100 à 531. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 100 à 531 (voir Tableau 4). SEQ ID NO : CASSETTE D’EXPRESSION + 5'UTR SEQ ID NO : CASSETTE D’EXPRESSION + 5'UTR 100 SV40-5'UTR ATF4-Noxa 343 2xAARE YB_TATA -5'UTR ATF4-Noxa 101 SV40-5'UTR AASS-Noxa 344 2xAARE YB_TATA -5'UTR AASS-Noxa 102 SV40-5'UTR ATF5-Noxa 345 2xAARE YB_TATA -5'UTR ATF5-Noxa 103 SV40-5'UTR AZIN1-Noxa 346 2xAARE YB_TATA -5'UTR AZIN1-Noxa 104 SV40-5'UTR BACE1-Noxa 347 2xAARE YB_TATA -5'UTR BACE1-Noxa 105 SV40-5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa 348 2xAARE YB_TATA -5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa 106 SV40-5'UTR C/EBPa-Noxa 349 2xAARE YB_TATA -5'UTR C/EBPa-Noxa 107 SV40-5'UTR CHOP-Noxa 350 2xAARE YB_TATA -5'UTR CHOP-Noxa 108 SV40-5'UTR CITED2-Noxa 351 2xAARE YB_TATA -5'UTR CITED2-Noxa 109 SV40-5'UTR CDK16-Noxa 352 2xAARE YB_TATA -5'UTR CDK16-Noxa 110 SV40-5'UTR CPT1C-Noxa 353 2xAARE YB_TATA -5'UTR CPT1C-Noxa 111 SV40-5'UTR DEDD2-Noxa 354 2xAARE YB_TATA -5'UTR DEDD2-Noxa 112 SV40-5'UTR DIAPH1-Noxa 355 2xAARE YB_TATA -5'UTR DIAPH1-Noxa 113 SV40-5'UTR GADD34-Noxa 356 2xAARE YB_TATA -5'UTR GADD34-Noxa 114 SV40-5'UTR HOXB2-Noxa 357 2xAARE YB_TATA -5'UTR HOXB2-Noxa 115 SV40-5'UTR IFDR1-Noxa 358 2xAARE YB_TATA -5'UTR IFDR1-Noxa 116 SV40-5'UTR JUN-Noxa 359 2xAARE YB_TATA -5'UTR JUN-Noxa 117 SV40-5'UTR MIEF1-Noxa 360 2xAARE YB_TATA -5'UTR MIEF1-Noxa 118 SV40-5'UTR NDST1-Noxa 361 2xAARE YB_TATA -5'UTR NDST1-Noxa 119 SV40-5'UTR PCNXL4-Noxa 362 2xAARE YB_TATA -5'UTR PCNXL4-Noxa 120 SV40-5'UTR PPP1R15B-Noxa 363 2xAARE YB_TATA -5'UTR PPP1R15B-Noxa 121 SV40-5'UTR PTP4A1-Noxa 364 2xAARE YB_TATA -5'UTR PTP4A1-Noxa 122 SV40-5'UTR SELK-Noxa 365 2xAARE YB_TATA -5'UTR SELK-Noxa 123 SV40-5'UTR TIE2-Noxa 366 2xAARE YB_TATA -5'UTR TIE2-Noxa 124 SV40-5'UTR TRB3-Noxa 367 2xAARE YB_TATA -5'UTR TRB3-Noxa 125 SV40-5'UTR UCP2-Noxa 368 2xAARE YB_TATA -5'UTR UCP2-Noxa 126 SV40-5'UTR VEGFa-Noxa 369 2xAARE YB_TATA -5'UTR VEGFa-Noxa 127 CMV-5'UTR ATF4-Noxa 370 2xAARE TK -5'UTR ATF4-Noxa 128 CMV-5'UTR AASS-Noxa 371 2xAARE TK -5'UTR AASS-Noxa 129 CMV-5'UTR ATF5-Noxa 372 2xAARE TK -5'UTR ATF5-Noxa 130 CMV-5'UTR AZIN1-Noxa 373 2xAARE TK -5'UTR AZIN1-Noxa 131 CMV-5'UTR BACE1-Noxa 374 2xAARE TK -5'UTR BACE1-Noxa 132 CMV-5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa 375 2xAARE TK -5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa 133 CMV-5'UTR C/EBPa-Noxa 376 2xAARE TK -5'UTR C/EBPa-Noxa 134 CMV-5'UTR CHOP-Noxa 377 2xAARE TK -5'UTR CHOP-Noxa 135 CMV-5'UTR CITED2-Noxa 378 2xAARE TK -5'UTR CITED2-Noxa 136 CMV-5'UTR CDK16-Noxa 379 2xAARE TK -5'UTR CDK16-Noxa 137 CMV-5'UTR CPT1C-Noxa 380 2xAARE TK -5'UTR CPT1C-Noxa 138 CMV-5'UTR DEDD2-Noxa 381 2xAARE TK -5'UTR DEDD2-Noxa 139 CMV-5'UTR DIAPH1-Noxa 382 2xAARE TK -5'UTR DIAPH1-Noxa 140 CMV-5'UTR GADD34-Noxa 383 2xAARE TK -5'UTR GADD34-Noxa 141 CMV-5'UTR HOXB2-Noxa 384 2xAARE TK -5'UTR HOXB2-Noxa 142 CMV-5'UTR IFDR1-Noxa 385 2xAARE TK -5'UTR IFDR1-Noxa 143 CMV-5'UTR JUN-Noxa 386 2xAARE TK -5'UTR JUN-Noxa 144 CMV-5'UTR MIEF1-Noxa 387 2xAARE TK -5'UTR MIEF1-Noxa 145 CMV-5'UTR NDST1-Noxa 388 2xAARE TK -5'UTR NDST1-Noxa 146 CMV-5'UTR PCNXL4-Noxa 389 2xAARE TK -5'UTR PCNXL4-Noxa 147 CMV-5'UTR PPP1R15B-Noxa 390 2xAARE TK -5'UTR PPP1R15B-Noxa 148 CMV-5'UTR PTP4A1-Noxa 391 2xAARE TK -5'UTR PTP4A1-Noxa 149 CMV-5'UTR SELK-Noxa 392 2xAARE TK -5'UTR SELK-Noxa 150 CMV-5'UTR TIE2-Noxa 393 2xAARE TK -5'UTR TIE2-Noxa 151 CMV-5'UTR TRB3-Noxa 394 2xAARE TK -5'UTR TRB3-Noxa 152 CMV-5'UTR UCP2-Noxa 395 2xAARE TK -5'UTR UCP2-Noxa 153 CMV-5'UTR VEGFa-Noxa 396 2xAARE TK -5'UTR VEGFa-Noxa 154 UbC-5'UTR ATF4-Noxa 397 4xSRE YB_TATA -5'UTR ATF4-Noxa 155 UbC-5'UTR AASS-Noxa 398 4xSRE YB_TATA -5'UTR AASS-Noxa 156 UbC-5'UTR ATF5-Noxa 399 4xSRE YB_TATA -5'UTR ATF5-Noxa 157 UbC-5'UTR AZIN1-Noxa 400 4xSRE YB_TATA -5'UTR AZIN1-Noxa 158 UbC-5'UTR BACE1-Noxa 401 4xSRE YB_TATA -5'UTR BACE1-Noxa 159 UbC-5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa 402 4xSRE YB_TATA -5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa 160 UbC-5'UTR C/EBPa-Noxa 403 4xSRE YB_TATA -5'UTR C/EBPa-Noxa 161 UbC-5'UTR CHOP-Noxa 404 4xSRE YB_TATA -5'UTR CHOP-Noxa 162 UbC-5'UTR CITED2-Noxa 405 4xSRE YB_TATA -5'UTR CITED2-Noxa 163 UbC-5'UTR CDK16-Noxa 406 4xSRE YB_TATA -5'UTR CDK16-Noxa 164 UbC-5'UTR CPT1C-Noxa 407 4xSRE YB_TATA -5'UTR CPT1C-Noxa 165 UbC-5'UTR DEDD2-Noxa 408 4xSRE YB_TATA -5'UTR DEDD2-Noxa 166 UbC-5'UTR DIAPH1-Noxa 409 4xSRE YB_TATA -5'UTR DIAPH1-Noxa 167 UbC-5'UTR GADD34-Noxa 410 4xSRE YB_TATA -5'UTR GADD34-Noxa 168 UbC-5'UTR HOXB2-Noxa 411 4xSRE YB_TATA -5'UTR HOXB2-Noxa 169 UbC-5'UTR IFDR1-Noxa 412 4xSRE YB_TATA -5'UTR IFDR1-Noxa 170 UbC-5'UTR JUN-Noxa 413 4xSRE YB_TATA -5'UTR JUN-Noxa 171 UbC-5'UTR MIEF1-Noxa 414 4xSRE YB_TATA -5'UTR MIEF1-Noxa 172 UbC-5'UTR NDST1-Noxa 415 4xSRE YB_TATA -5'UTR NDST1-Noxa 173 UbC-5'UTR PCNXL4-Noxa 416 4xSRE YB_TATA -5'UTR PCNXL4-Noxa 174 UbC-5'UTR PPP1R15B-Noxa 417 4xSRE YB_TATA -5'UTR PPP1R15B-Noxa 175 UbC-5'UTR PTP4A1-Noxa 418 4xSRE YB_TATA -5'UTR PTP4A1-Noxa 176 UbC-5'UTR SELK-Noxa 419 4xSRE YB_TATA -5'UTR SELK-Noxa 177 UbC-5'UTR TIE2-Noxa 420 4xSRE YB_TATA -5'UTR TIE2-Noxa 178 UbC-5'UTR TRB3-Noxa 421 4xSRE YB_TATA -5'UTR TRB3-Noxa 179 UbC-5'UTR UCP2-Noxa 422 4xSRE YB_TATA -5'UTR UCP2-Noxa 180 UbC-5'UTR VEGFa-Noxa 423 4xSRE YB_TATA -5'UTR VEGFa-Noxa 181 EF1-a core-5'UTR ATF4-Noxa 424 9xHRE YB_TATA -5'UTR ATF4-Noxa 182 EF1-a core-5'UTR AASS-Noxa 425 9xHRE YB_TATA -5'UTR AASS-Noxa 183 EF1-a core-5'UTR ATF5-Noxa 426 9xHRE YB_TATA -5'UTR ATF5-Noxa 184 EF1-a core-5'UTR AZIN1-Noxa 427 9xHRE YB_TATA -5'UTR AZIN1-Noxa 185 EF1-a core-5'UTR BACE1-Noxa 428 9xHRE YB_TATA -5'UTR BACE1-Noxa 186 EF1-a core-5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa 429 9xHRE YB_TATA -5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa 187 EF1-a core-5'UTR C/EBPa-Noxa 430 9xHRE YB_TATA -5'UTR C/EBPa-Noxa 188 EF1-a core-5'UTR CHOP-Noxa 431 9xHRE YB_TATA -5'UTR CHOP-Noxa 189 EF1-a core-5'UTR CITED2-Noxa 432 9xHRE YB_TATA -5'UTR CITED2-Noxa 190 EF1-a core-5'UTR CDK16-Noxa 433 9xHRE YB_TATA -5'UTR CDK16-Noxa 191 EF1-a core-5'UTR CPT1C-Noxa 434 9xHRE YB_TATA -5'UTR CPT1C-Noxa 192 EF1-a core-5'UTR DEDD2-Noxa 435 9xHRE YB_TATA -5'UTR DEDD2-Noxa 193 EF1-a core-5'UTR DIAPH1-Noxa 436 9xHRE YB_TATA -5'UTR DIAPH1-Noxa 194 EF1-a core-5'UTR GADD34-Noxa 437 9xHRE YB_TATA -5'UTR GADD34-Noxa 195 EF1-a core-5'UTR HOXB2-Noxa 438 9xHRE YB_TATA -5'UTR HOXB2-Noxa 196 EF1-a core-5'UTR IFDR1-Noxa 439 9xHRE YB_TATA -5'UTR IFDR1-Noxa 197 EF1-a core-5'UTR JUN-Noxa 440 9xHRE YB_TATA -5'UTR JUN-Noxa 198 EF1-a core-5'UTR MIEF1-Noxa 441 9xHRE YB_TATA -5'UTR MIEF1-Noxa 199 EF1-a core-5'UTR NDST1-Noxa 442 9xHRE YB_TATA -5'UTR NDST1-Noxa 200 EF1-a core-5'UTR PCNXL4-Noxa 443 9xHRE YB_TATA -5'UTR PCNXL4-Noxa 201 EF1-a core-5'UTR PPP1R15B-Noxa 444 9xHRE YB_TATA -5'UTR PPP1R15B-Noxa 202 EF1-a core-5'UTR PTP4A1-Noxa 445 9xHRE YB_TATA -5'UTR PTP4A1-Noxa 203 EF1-a core-5'UTR SELK-Noxa 446 9xHRE YB_TATA -5'UTR SELK-Noxa 204 EF1-a core-5'UTR TIE2-Noxa 447 9xHRE YB_TATA -5'UTR TIE2-Noxa 205 EF1-a core-5'UTR TRB3-Noxa 448 9xHRE YB_TATA -5'UTR TRB3-Noxa 206 EF1-a core-5'UTR UCP2-Noxa 449 9xHRE YB_TATA -5'UTR UCP2-Noxa 207 EF1-a core-5'UTR VEGFa-Noxa 450 9xHRE YB_TATA -5'UTR VEGFa-Noxa 208 EF1-a long-5'UTR ATF4-Noxa 451 GRP78 YB_TATA -5'UTR ATF4-Noxa 209 EF1-a long-5'UTR AASS-Noxa 452 GRP78 YB_TATA -5'UTR AASS-Noxa 210 EF1-a long-5'UTR ATF5-Noxa 453 GRP78 YB_TATA -5'UTR ATF5-Noxa 211 EF1-a long-5'UTR AZIN1-Noxa 454 GRP78 YB_TATA -5'UTR AZIN1-Noxa 212 EF1-a long-5'UTR BACE1-Noxa 455 GRP78 YB_TATA -5'UTR BACE1-Noxa 213 EF1-a long-5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa 456 GRP78 YB_TATA -5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa 214 EF1-a long-5'UTR C/EBPa-Noxa 457 GRP78 YB_TATA -5'UTR C/EBPa-Noxa 215 EF1-a long-5'UTR CHOP-Noxa 458 GRP78 YB_TATA -5'UTR CHOP-Noxa 216 EF1-a long-5'UTR CITED2-Noxa 459 GRP78 YB_TATA -5'UTR CITED2-Noxa 217 EF1-a long-5'UTR CDK16-Noxa 460 GRP78 YB_TATA -5'UTR CDK16-Noxa 218 EF1-a long-5'UTR CPT1C-Noxa 461 GRP78 YB_TATA -5'UTR CPT1C-Noxa 219 EF1-a long-5'UTR DEDD2-Noxa 462 GRP78 YB_TATA -5'UTR DEDD2-Noxa 220 EF1-a long-5'UTR DIAPH1-Noxa 463 GRP78 YB_TATA -5'UTR DIAPH1-Noxa 221 EF1-a long-5'UTR GADD34-Noxa 464 GRP78 YB_TATA -5'UTR GADD34-Noxa 222 EF1-a long-5'UTR HOXB2-Noxa 465 GRP78 YB_TATA -5'UTR HOXB2-Noxa 223 EF1-a long-5'UTR IFDR1-Noxa 466 GRP78 YB_TATA -5'UTR IFDR1-Noxa 224 EF1-a long-5'UTR JUN-Noxa 467 GRP78 YB_TATA -5'UTR JUN-Noxa 225 EF1-a long-5'UTR MIEF1-Noxa 468 GRP78 YB_TATA -5'UTR MIEF1-Noxa 226 EF1-a long-5'UTR NDST1-Noxa 469 GRP78 YB_TATA -5'UTR NDST1-Noxa 227 EF1-a long-5'UTR PCNXL4-Noxa 470 GRP78 YB_TATA -5'UTR PCNXL4-Noxa 228 EF1-a long-5'UTR PPP1R15B-Noxa 471 GRP78 YB_TATA -5'UTR PPP1R15B-Noxa 229 EF1-a long-5'UTR PTP4A1-Noxa 472 GRP78 YB_TATA -5'UTR PTP4A1-Noxa 230 EF1-a long-5'UTR SELK-Noxa 473 GRP78 YB_TATA -5'UTR SELK-Noxa 231 EF1-a long-5'UTR TIE2-Noxa 474 GRP78 YB_TATA -5'UTR TIE2-Noxa 232 EF1-a long-5'UTR TRB3-Noxa 475 GRP78 YB_TATA -5'UTR TRB3-Noxa 233 EF1-a long-5'UTR UCP2-Noxa 476 GRP78 YB_TATA -5'UTR UCP2-Noxa 234 EF1-a long-5'UTR VEGFa-Noxa 477 GRP78 YB_TATA -5'UTR VEGFa-Noxa 235 hPGK-5'UTR ATF4-Noxa 478 miR223-5'UTR ATF4-Noxa 236 hPGK-5'UTR AASS-Noxa 479 miR223-5'UTR AASS-Noxa 237 hPGK-5'UTR ATF5-Noxa 480 miR223-5'UTR ATF5-Noxa 238 hPGK-5'UTR AZIN1-Noxa 481 miR223-5'UTR AZIN1-Noxa 239 hPGK-5'UTR BACE1-Noxa 482 miR223-5'UTR BACE1-Noxa 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258 hPGK-5'UTR TIE2-Noxa 501 miR223-5'UTR TIE2-Noxa 259 hPGK-5'UTR TRB3-Noxa 502 miR223-5'UTR TRB3-Noxa 260 hPGK-5'UTR UCP2-Noxa 503 miR223-5'UTR UCP2-Noxa 261 hPGK-5'UTR VEGFa-Noxa 504 miR223-5'UTR VEGFa-Noxa 262 CAGG-5'UTR ATF4-Noxa 505 miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR ATF4-Noxa 263 CAGG-5'UTR AASS-Noxa 506 miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR AASS-Noxa 264 CAGG-5'UTR ATF5-Noxa 507 miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR ATF5-Noxa 265 CAGG-5'UTR AZIN1-Noxa 508 miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR AZIN1-Noxa 266 CAGG-5'UTR BACE1-Noxa 509 miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR BACE1-Noxa 267 CAGG-5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa 510 miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa 268 CAGG-5'UTR C/EBPa-Noxa 511 miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR C/EBPa-Noxa 269 CAGG-5'UTR CHOP-Noxa 512 miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR CHOP-Noxa 270 CAGG-5'UTR CITED2-Noxa 513 miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR CITED2-Noxa 271 CAGG-5'UTR CDK16-Noxa 514 miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR CDK16-Noxa 272 CAGG-5'UTR CPT1C-Noxa 515 miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR CPT1C-Noxa 273 CAGG-5'UTR DEDD2-Noxa 516 miniCHAC1 YB_TATA 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VEGFa-Noxa 289 RSV-5'UTR ATF4-Noxa 290 RSV-5'UTR AASS-Noxa 291 RSV-5'UTR ATF5-Noxa 292 RSV-5'UTR AZIN1-Noxa 293 RSV-5'UTR BACE1-Noxa 294 RSV-5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa 295 RSV-5'UTR C/EBPa-Noxa 296 RSV-5'UTR CHOP-Noxa 297 RSV-5'UTR CITED2-Noxa 298 RSV-5'UTR CDK16-Noxa 299 RSV-5'UTR CPT1C-Noxa 300 RSV-5'UTR DEDD2-Noxa 301 RSV-5'UTR DIAPH1-Noxa 302 RSV-5'UTR GADD34-Noxa 303 RSV-5'UTR HOXB2-Noxa 304 RSV-5'UTR IFDR1-Noxa 305 RSV-5'UTR JUN-Noxa 306 RSV-5'UTR MIEF1-Noxa 307 RSV-5'UTR NDST1-Noxa 308 RSV-5'UTR PCNXL4-Noxa 309 RSV-5'UTR PPP1R15B-Noxa 310 RSV-5'UTR PTP4A1-Noxa 311 RSV-5'UTR SELK-Noxa 312 RSV-5'UTR TIE2-Noxa 313 RSV-5'UTR TRB3-Noxa 314 RSV-5'UTR UCP2-Noxa 315 RSV-5'UTR VEGFa-Noxa 316 SFFV-5'UTR ATF4-Noxa 317 SFFV-5'UTR AASS-Noxa 318 SFFV-5'UTR ATF5-Noxa 319 SFFV-5'UTR AZIN1-Noxa 320 SFFV-5'UTR BACE1-Noxa 321 SFFV-5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa 322 SFFV-5'UTR C/EBPa-Noxa 323 SFFV-5'UTR CHOP-Noxa 324 SFFV-5'UTR CITED2-Noxa 325 SFFV-5'UTR CDK16-Noxa 326 SFFV-5'UTR CPT1C-Noxa 327 SFFV-5'UTR DEDD2-Noxa 328 SFFV-5'UTR DIAPH1-Noxa 329 SFFV-5'UTR GADD34-Noxa 330 SFFV-5'UTR HOXB2-Noxa 331 SFFV-5'UTR IFDR1-Noxa 332 SFFV-5'UTR JUN-Noxa 333 SFFV-5'UTR MIEF1-Noxa 334 SFFV-5'UTR NDST1-Noxa 335 SFFV-5'UTR PCNXL4-Noxa 336 SFFV-5'UTR PPP1R15B-Noxa 337 SFFV-5'UTR PTP4A1-Noxa 338 SFFV-5'UTR SELK-Noxa 339 SFFV-5'UTR TIE2-Noxa 340 SFFV-5'UTR TRB3-Noxa 341 SFFV-5'UTR UCP2-Noxa 342 SFFV-5'UTR VEGFa-Noxa Tableau 4. Liste des cassettes d’expression comprenant un 5’UTR Au vu de ce qui précède, on comprend également que l’invention met en œuvre le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 532 à 1 395. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ledit génome vecteur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 532 à 1 395 (voir Tableau 5). SEQ ID NO : GENOME VECTEUR (SIN) SEQ ID NO : GENOME VECTEUR (RSV) 532 LV G2 (SIN)-SV40-5'UTR ATF4-Noxa 964 LV G3 (RSV)-SV40-5'UTR ATF4-Noxa 533 LV G2 (SIN)-SV40-5'UTR AASS-Noxa 965 LV G3 (RSV)-SV40-5'UTR AASS-Noxa 534 LV G2 (SIN)-SV40-5'UTR ATF5-Noxa 966 LV G3 (RSV)-SV40-5'UTR ATF5-Noxa 535 LV G2 (SIN)-SV40-5'UTR AZIN1-Noxa 967 LV G3 (RSV)-SV40-5'UTR AZIN1-Noxa 536 LV G2 (SIN)-SV40-5'UTR BACE1-Noxa 968 LV G3 (RSV)-SV40-5'UTR BACE1-Noxa 537 LV G2 (SIN)-SV40-5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa 969 LV G3 (RSV)-SV40-5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa 538 LV G2 (SIN)-SV40-5'UTR C/EBPa-Noxa 970 LV G3 (RSV)-SV40-5'UTR C/EBPa-Noxa 539 LV G2 (SIN)-SV40-5'UTR CHOP-Noxa 971 LV G3 (RSV)-SV40-5'UTR CHOP-Noxa 540 LV G2 (SIN)-SV40-5'UTR CITED2-Noxa 972 LV G3 (RSV)-SV40-5'UTR CITED2-Noxa 541 LV G2 (SIN)-SV40-5'UTR CDK16-Noxa 973 LV G3 (RSV)-SV40-5'UTR CDK16-Noxa 542 LV G2 (SIN)-SV40-5'UTR CPT1C-Noxa 974 LV G3 (RSV)-SV40-5'UTR CPT1C-Noxa 543 LV G2 (SIN)-SV40-5'UTR DEDD2-Noxa 975 LV G3 (RSV)-SV40-5'UTR DEDD2-Noxa 544 LV G2 (SIN)-SV40-5'UTR DIAPH1-Noxa 976 LV G3 (RSV)-SV40-5'UTR DIAPH1-Noxa 545 LV G2 (SIN)-SV40-5'UTR GADD34-Noxa 977 LV G3 (RSV)-SV40-5'UTR GADD34-Noxa 546 LV G2 (SIN)-SV40-5'UTR HOXB2-Noxa 978 LV G3 (RSV)-SV40-5'UTR HOXB2-Noxa 547 LV G2 (SIN)-SV40-5'UTR IFDR1-Noxa 979 LV G3 (RSV)-SV40-5'UTR IFDR1-Noxa 548 LV G2 (SIN)-SV40-5'UTR JUN-Noxa 980 LV G3 (RSV)-SV40-5'UTR JUN-Noxa 549 LV G2 (SIN)-SV40-5'UTR MIEF1-Noxa 981 LV G3 (RSV)-SV40-5'UTR MIEF1-Noxa 550 LV G2 (SIN)-SV40-5'UTR NDST1-Noxa 982 LV G3 (RSV)-SV40-5'UTR NDST1-Noxa 551 LV G2 (SIN)-SV40-5'UTR PCNXL4-Noxa 983 LV G3 (RSV)-SV40-5'UTR PCNXL4-Noxa 552 LV G2 (SIN)-SV40-5'UTR PPP1R15B-Noxa 984 LV G3 (RSV)-SV40-5'UTR PPP1R15B-Noxa 553 LV G2 (SIN)-SV40-5'UTR PTP4A1-Noxa 985 LV G3 (RSV)-SV40-5'UTR PTP4A1-Noxa 554 LV G2 (SIN)-SV40-5'UTR SELK-Noxa 986 LV G3 (RSV)-SV40-5'UTR SELK-Noxa 555 LV G2 (SIN)-SV40-5'UTR TIE2-Noxa 987 LV G3 (RSV)-SV40-5'UTR TIE2-Noxa 556 LV G2 (SIN)-SV40-5'UTR TRB3-Noxa 988 LV G3 (RSV)-SV40-5'UTR TRB3-Noxa 557 LV G2 (SIN)-SV40-5'UTR UCP2-Noxa 989 LV G3 (RSV)-SV40-5'UTR UCP2-Noxa 558 LV G2 (SIN)-SV40-5'UTR VEGFa-Noxa 990 LV G3 (RSV)-SV40-5'UTR VEGFa-Noxa 559 LV G2 (SIN)-CMV-5'UTR ATF4-Noxa 991 LV G3 (RSV)-CMV-5'UTR ATF4-Noxa 560 LV G2 (SIN)-CMV-5'UTR AASS-Noxa 992 LV G3 (RSV)-CMV-5'UTR AASS-Noxa 561 LV G2 (SIN)-CMV-5'UTR ATF5-Noxa 993 LV G3 (RSV)-CMV-5'UTR ATF5-Noxa 562 LV G2 (SIN)-CMV-5'UTR AZIN1-Noxa 994 LV G3 (RSV)-CMV-5'UTR AZIN1-Noxa 563 LV G2 (SIN)-CMV-5'UTR BACE1-Noxa 995 LV G3 (RSV)-CMV-5'UTR BACE1-Noxa 564 LV G2 (SIN)-CMV-5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa 996 LV G3 (RSV)-CMV-5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa 565 LV G2 (SIN)-CMV-5'UTR C/EBPa-Noxa 997 LV G3 (RSV)-CMV-5'UTR C/EBPa-Noxa 566 LV G2 (SIN)-CMV-5'UTR CHOP-Noxa 998 LV G3 (RSV)-CMV-5'UTR CHOP-Noxa 567 LV G2 (SIN)-CMV-5'UTR CITED2-Noxa 999 LV G3 (RSV)-CMV-5'UTR CITED2-Noxa 568 LV G2 (SIN)-CMV-5'UTR CDK16-Noxa 1000 LV G3 (RSV)-CMV-5'UTR CDK16-Noxa 569 LV G2 (SIN)-CMV-5'UTR CPT1C-Noxa 1001 LV G3 (RSV)-CMV-5'UTR CPT1C-Noxa 570 LV G2 (SIN)-CMV-5'UTR 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TIE2-Noxa 934 LV G2 (SIN)-miR223-5'UTR TRB3-Noxa 1366 LV G3 (RSV)-miR223-5'UTR TRB3-Noxa 935 LV G2 (SIN)-miR223-5'UTR UCP2-Noxa 1367 LV G3 (RSV)-miR223-5'UTR UCP2-Noxa 936 LV G2 (SIN)-miR223-5'UTR VEGFa-Noxa 1368 LV G3 (RSV)-miR223-5'UTR VEGFa-Noxa 937 LV G2 (SIN)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR ATF4-Noxa 1369 LV G3 (RSV)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR ATF4-Noxa 938 LV G2 (SIN)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR AASS-Noxa 1370 LV G3 (RSV)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR AASS-Noxa 939 LV G2 (SIN)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR ATF5-Noxa 1371 LV G3 (RSV)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR ATF5-Noxa 940 LV G2 (SIN)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR AZIN1-Noxa 1372 LV G3 (RSV)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR AZIN1-Noxa 941 LV G2 (SIN)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR BACE1-Noxa 1373 LV G3 (RSV)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR BACE1-Noxa 942 LV G2 (SIN)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa 1374 LV G3 (RSV)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa 943 LV G2 (SIN)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR C/EBPa-Noxa 1375 LV G3 (RSV)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR C/EBPa-Noxa 944 LV G2 (SIN)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR CHOP-Noxa 1376 LV G3 (RSV)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR CHOP-Noxa 945 LV G2 (SIN)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR CITED2-Noxa 1377 LV G3 (RSV)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR CITED2-Noxa 946 LV G2 (SIN)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR CDK16-Noxa 1378 LV G3 (RSV)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR CDK16-Noxa 947 LV G2 (SIN)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR CPT1C-Noxa 1379 LV G3 (RSV)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR CPT1C-Noxa 948 LV G2 (SIN)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR DEDD2-Noxa 1380 LV G3 (RSV)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR DEDD2-Noxa 949 LV G2 (SIN)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR DIAPH1-Noxa 1381 LV G3 (RSV)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR DIAPH1-Noxa 950 LV G2 (SIN)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR GADD34-Noxa 1382 LV G3 (RSV)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR GADD34-Noxa 951 LV G2 (SIN)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR HOXB2-Noxa 1383 LV G3 (RSV)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR HOXB2-Noxa 952 LV G2 (SIN)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR IFDR1-Noxa 1384 LV G3 (RSV)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR IFDR1-Noxa 953 LV G2 (SIN)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR JUN-Noxa 1385 LV G3 (RSV)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR JUN-Noxa 954 LV G2 (SIN)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR MIEF1-Noxa 1386 LV G3 (RSV)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR MIEF1-Noxa 955 LV G2 (SIN)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR NDST1-Noxa 1387 LV G3 (RSV)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR NDST1-Noxa 956 LV G2 (SIN)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR PCNXL4-Noxa 1388 LV G3 (RSV)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR PCNXL4-Noxa 957 LV G2 (SIN)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR PPP1R15B-Noxa 1389 LV G3 (RSV)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR PPP1R15B-Noxa 958 LV G2 (SIN)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR PTP4A1-Noxa 1390 LV G3 (RSV)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR PTP4A1-Noxa 959 LV G2 (SIN)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR SELK-Noxa 1391 LV G3 (RSV)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR SELK-Noxa 960 LV G2 (SIN)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR TIE2-Noxa 1392 LV G3 (RSV)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR TIE2-Noxa 961 LV G2 (SIN)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR TRB3-Noxa 1393 LV G3 (RSV)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR TRB3-Noxa 962 LV G2 (SIN)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR UCP2-Noxa 1394 LV G3 (RSV)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR UCP2-Noxa 963 LV G2 (SIN)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR VEGFa-Noxa 1395 LV G3 (RSV)-miniCHAC1YB_TATA-5'UTR VEGFa-Noxa Tableau 5. Liste des génomes vecteurs comprenant un 5’UTR De manière intéressante, il convient de noter que pour optimiser la production dudit génome vecteur tel que décrit ci-dessus et rajouter une sécurité, l’orientation 5’ vers 3’ (5’ > 3’) de la transcription de ladite cassette d’expression telle que décrite ci-dessus est inversée par rapport à l’orientation 5’ vers 3’ de la transcription dudit génome lentiviral. Aussi et selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel dans lequel l’orientation 5’ vers 3’ de la transcription de ladite cassette d’expression est inversée par rapport à l’orientation 5’ vers 3’ de la transcription dudit génome lentiviral, en particulier ladite cassette d’expression comprenant en outre à l’extrémité 3’ ( en aval ) dudit transgène toxique ou suicide codant une protéine Noxa une séquence d’acides nucléiques permettant la transcription d’une queue polyA. Lorsque ce mode de réalisation est mis en œuvre, le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, comprend en particulier à l’extrémité 3’ dudit transgène d’intérêt une séquence polyA ( e.g. SEQ ID NO : 1 396). En effet, l’orientation 5’ vers 3’ de la transcription de ladite cassette d’expression telle que décrite ci-dessus étant inversée par rapport à l’orientation 5’ vers 3’ de la transcription dudit génome lentiviral, l’ajout de cette séquence polyA ( e.g. SEQ ID NO : 1 396) à l’extrémité 3’ de l’acide nucléique codant pour ledit transgène toxique ou suicide permet de favoriser la transcription et la stabilité d’un ARNm, lequel autorise la traduction dudit transgène d’intérêt notamment lorsque est levée l’inhibition de la traduction par ladite séquence codante ou non codante ayant des propriétés régulatrices au niveau post -transcriptionnel. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a donc pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, ladite cassette d’expression comprenant en outre une queue polyA dont la séquence d’acides nucléiques est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 1 396. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, ladite cassette d’expression comprenant en outre une queue polyA de séquence SEQ ID NO : 1 396. Au vu de ce qui précède, on comprend que l’invention met en œuvre le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression comprend en outre une queue polyA et est choisie parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 1 397 à 1 412. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression comprend en outre une queue polyA et est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 1 397 à 1 412 (voir Tableau 6). SEQ ID NO : CASSETTE D’EXPRESSION + QUEUE POLYA 1397 SV40-Noxa-polyA 1398 CMV-Noxa-polyA 1399 UbC-Noxa-polyA 1400 EF1-a core-Noxa-polyA 1401 EF1-a long-Noxa-polyA 1402 hPGK-Noxa-polyA 1403 CAGG-Noxa-polyA 1404 RSV-Noxa-polyA 1405 SFFV-Noxa-polyA 1406 2xAARE YB_TATA -Noxa-polyA 1407 2xAARE TK -Noxa-polyA 1408 4xSRE YB_TATA -Noxa-polyA 1409 9xHRE YB_TATA -Noxa-polyA 1410 GRP78 YB_TATA -Noxa-polyA 1411 miR223-Noxa-polyA 1412 miniCHAC1 YB_TATA -Noxa-polyA Tableau 6. Liste des cassettes d’expression comprenant un e queue polyA Au vu de ce qui précède, on comprend également que l’invention met en œuvre le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression comprend en outre une queue polyA et dont l’orientation 5’ vers 3’ (5’ > 3’) de la transcription est inversée par rapport à l’orientation 5’ vers 3’ de la transcription dudit génome lentiviral, ledit génome vecteur étant choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 1 845 à 1 876. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression comprend en outre une queue polyA et dont l’orientation 5’ vers 3’ (5’ > 3’) de la transcription est inversée par rapport à l’orientation 5’ vers 3’ de la transcription dudit génome lentiviral, ledit génome vecteur étant choisi parmi les SEQ ID NOs : 1 845 à 1 876 (voir Tableau 7). SEQ ID NO : GENOME VECTEUR « INVERSE » (SIN) SEQ ID NO : GENOME VECTEUR « INVERSE » (RSV) 1845 LVi G2 (SIN)-SV40-Noxa-polyA 1861 LVi G3 (RSV)-SV40-Noxa-polyA 1846 LVi G2 (SIN)-CMV-Noxa-polyA 1862 LVi G3 (RSV)-CMV-Noxa-polyA 1847 LVi G2 (SIN)-UbC-Noxa-polyA 1863 LVi G3 (RSV)-UbC-Noxa-polyA 1848 LVi G2 (SIN)-EF1-a core-Noxa-polyA 1864 LVi G3 (RSV)-EF1-a core-Noxa-polyA 1849 LVi G2 (SIN)-EF1-a long-Noxa-polyA 1865 LVi G3 (RSV)-EF1-a long-Noxa-polyA 1850 LVi G2 (SIN)-hPGK-Noxa-polyA 1866 LVi G3 (RSV)-hPGK-Noxa-polyA 1851 LVi G2 (SIN)-CAGG-Noxa-polyA 1867 LVi G3 (RSV)-CAGG-Noxa-polyA 1852 LVi G2 (SIN)-RSV-Noxa-polyA 1868 LVi G3 (RSV)-RSV-Noxa-polyA 1853 LVi G2 (SIN)-SFFV-Noxa-polyA 1869 LVi G3 (RSV)-SFFV-Noxa-polyA 1854 LVi G2 (SIN)-2xAARE YB_TATA -Noxa-polyA 1870 LVi G3 (RSV)-2xAARE YB_TATA -Noxa-polyA 1855 LVi G2 (SIN)-2xAARE TK -Noxa-polyA 1871 LVi G3 (RSV)-2xAARE TK -Noxa-polyA 1856 LVi G2 (SIN)-4xSRE YB_TATA -Noxa-polyA 1872 LVi G3 (RSV)-4xSRE YB_TATA -Noxa-polyA 1857 LVi G2 (SIN)-9xHRE YB_TATA -Noxa-polyA 1873 LVi G3 (RSV)-9xHRE YB_TATA -Noxa-polyA 1858 LVi G2 (SIN)-GRP78 YB_TATA -Noxa-polyA 1874 LVi G3 (RSV)-GRP78 YB_TATA -Noxa-polyA 1859 LVi G2 (SIN)-miR223-Noxa-polyA 1875 LVi G3 (RSV)-miR223-Noxa-polyA 1860 LVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -Noxa-polyA 1876 LVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -Noxa-polyA Tableau 7. Liste des génomes vecteurs « inversés » comprenant une queue polyA Au vu de ce qui précède, on comprend également que l’invention met en œuvre le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression comprend en outre une séquence codante ou non codante ayant des propriétés régulatrices au niveau post -transcriptionnel et une queue polyA, et est choisie parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 1 413 à 1 844. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression comprend en outre une séquence codante ou non codante ayant des propriétés régulatrices au niveau post -transcriptionnel et une queue polyA, et est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 1 413 à 1 844 (voir Tableau 8). SEQ ID NO : CASSETTE D’EXPRESSION + 5’UTR + QUEUE POLYA SEQ ID NO : CASSETTE D’EXPRESSION + 5’UTR + QUEUE POLYA 1413 SV40-5'UTR ATF4-Noxa-polyA 1656 2xAARE YB_TATA -5'UTR ATF4-Noxa-polyA 1414 SV40-5'UTR AASS-Noxa-polyA 1657 2xAARE YB_TATA -5'UTR AASS-Noxa-polyA 1415 SV40-5'UTR ATF5-Noxa-polyA 1658 2xAARE YB_TATA -5'UTR ATF5-Noxa-polyA 1416 SV40-5'UTR AZIN1-Noxa-polyA 1659 2xAARE YB_TATA -5'UTR AZIN1-Noxa-polyA 1417 SV40-5'UTR BACE1-Noxa-polyA 1660 2xAARE YB_TATA -5'UTR BACE1-Noxa-polyA 1418 SV40-5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa-polyA 1661 2xAARE YB_TATA -5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa-polyA 1419 SV40-5'UTR C/EBPa-Noxa-polyA 1662 2xAARE YB_TATA -5'UTR C/EBPa-Noxa-polyA 1420 SV40-5'UTR CHOP-Noxa-polyA 1663 2xAARE YB_TATA -5'UTR CHOP-Noxa-polyA 1421 SV40-5'UTR CITED2-Noxa-polyA 1664 2xAARE YB_TATA -5'UTR CITED2-Noxa-polyA 1422 SV40-5'UTR CDK16-Noxa-polyA 1665 2xAARE YB_TATA -5'UTR CDK16-Noxa-polyA 1423 SV40-5'UTR CPT1C-Noxa-polyA 1666 2xAARE YB_TATA -5'UTR CPT1C-Noxa-polyA 1424 SV40-5'UTR DEDD2-Noxa-polyA 1667 2xAARE YB_TATA -5'UTR DEDD2-Noxa-polyA 1425 SV40-5'UTR DIAPH1-Noxa-polyA 1668 2xAARE YB_TATA -5'UTR DIAPH1-Noxa-polyA 1426 SV40-5'UTR GADD34-Noxa-polyA 1669 2xAARE YB_TATA -5'UTR GADD34-Noxa-polyA 1427 SV40-5'UTR HOXB2-Noxa-polyA 1670 2xAARE YB_TATA -5'UTR HOXB2-Noxa-polyA 1428 SV40-5'UTR IFDR1-Noxa-polyA 1671 2xAARE YB_TATA -5'UTR IFDR1-Noxa-polyA 1429 SV40-5'UTR JUN-Noxa-polyA 1672 2xAARE YB_TATA -5'UTR JUN-Noxa-polyA 1430 SV40-5'UTR MIEF1-Noxa-polyA 1673 2xAARE YB_TATA -5'UTR MIEF1-Noxa-polyA 1431 SV40-5'UTR NDST1-Noxa-polyA 1674 2xAARE YB_TATA -5'UTR NDST1-Noxa-polyA 1432 SV40-5'UTR PCNXL4-Noxa-polyA 1675 2xAARE YB_TATA -5'UTR PCNXL4-Noxa-polyA 1433 SV40-5'UTR PPP1R15B-Noxa-polyA 1676 2xAARE YB_TATA -5'UTR PPP1R15B-Noxa-polyA 1434 SV40-5'UTR PTP4A1-Noxa-polyA 1677 2xAARE YB_TATA -5'UTR PTP4A1-Noxa-polyA 1435 SV40-5'UTR SELK-Noxa-polyA 1678 2xAARE YB_TATA -5'UTR SELK-Noxa-polyA 1436 SV40-5'UTR TIE2-Noxa-polyA 1679 2xAARE YB_TATA -5'UTR TIE2-Noxa-polyA 1437 SV40-5'UTR TRB3-Noxa-polyA 1680 2xAARE YB_TATA -5'UTR TRB3-Noxa-polyA 1438 SV40-5'UTR UCP2-Noxa-polyA 1681 2xAARE YB_TATA -5'UTR UCP2-Noxa-polyA 1439 SV40-5'UTR VEGFa-Noxa-polyA 1682 2xAARE YB_TATA -5'UTR VEGFa-Noxa-polyA 1440 CMV-5'UTR ATF4-Noxa-polyA 1683 2xAARE TK -5'UTR ATF4-Noxa-polyA 1441 CMV-5'UTR AASS-Noxa-polyA 1684 2xAARE TK -5'UTR AASS-Noxa-polyA 1442 CMV-5'UTR ATF5-Noxa-polyA 1685 2xAARE TK -5'UTR ATF5-Noxa-polyA 1443 CMV-5'UTR AZIN1-Noxa-polyA 1686 2xAARE TK -5'UTR AZIN1-Noxa-polyA 1444 CMV-5'UTR BACE1-Noxa-polyA 1687 2xAARE TK -5'UTR BACE1-Noxa-polyA 1445 CMV-5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa-polyA 1688 2xAARE TK -5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa-polyA 1446 CMV-5'UTR C/EBPa-Noxa-polyA 1689 2xAARE TK -5'UTR C/EBPa-Noxa-polyA 1447 CMV-5'UTR CHOP-Noxa-polyA 1690 2xAARE TK -5'UTR CHOP-Noxa-polyA 1448 CMV-5'UTR CITED2-Noxa-polyA 1691 2xAARE TK -5'UTR CITED2-Noxa-polyA 1449 CMV-5'UTR CDK16-Noxa-polyA 1692 2xAARE TK -5'UTR CDK16-Noxa-polyA 1450 CMV-5'UTR CPT1C-Noxa-polyA 1693 2xAARE TK -5'UTR CPT1C-Noxa-polyA 1451 CMV-5'UTR DEDD2-Noxa-polyA 1694 2xAARE TK -5'UTR DEDD2-Noxa-polyA 1452 CMV-5'UTR DIAPH1-Noxa-polyA 1695 2xAARE TK -5'UTR DIAPH1-Noxa-polyA 1453 CMV-5'UTR GADD34-Noxa-polyA 1696 2xAARE TK -5'UTR GADD34-Noxa-polyA 1454 CMV-5'UTR HOXB2-Noxa-polyA 1697 2xAARE TK -5'UTR HOXB2-Noxa-polyA 1455 CMV-5'UTR IFDR1-Noxa-polyA 1698 2xAARE TK -5'UTR IFDR1-Noxa-polyA 1456 CMV-5'UTR JUN-Noxa-polyA 1699 2xAARE TK -5'UTR JUN-Noxa-polyA 1457 CMV-5'UTR MIEF1-Noxa-polyA 1700 2xAARE TK -5'UTR MIEF1-Noxa-polyA 1458 CMV-5'UTR NDST1-Noxa-polyA 1701 2xAARE TK -5'UTR NDST1-Noxa-polyA 1459 CMV-5'UTR PCNXL4-Noxa-polyA 1702 2xAARE TK -5'UTR PCNXL4-Noxa-polyA 1460 CMV-5'UTR PPP1R15B-Noxa-polyA 1703 2xAARE TK -5'UTR PPP1R15B-Noxa-polyA 1461 CMV-5'UTR PTP4A1-Noxa-polyA 1704 2xAARE TK -5'UTR PTP4A1-Noxa-polyA 1462 CMV-5'UTR SELK-Noxa-polyA 1705 2xAARE TK -5'UTR SELK-Noxa-polyA 1463 CMV-5'UTR TIE2-Noxa-polyA 1706 2xAARE TK -5'UTR TIE2-Noxa-polyA 1464 CMV-5'UTR TRB3-Noxa-polyA 1707 2xAARE TK -5'UTR TRB3-Noxa-polyA 1465 CMV-5'UTR UCP2-Noxa-polyA 1708 2xAARE TK -5'UTR UCP2-Noxa-polyA 1466 CMV-5'UTR VEGFa-Noxa-polyA 1709 2xAARE TK -5'UTR VEGFa-Noxa-polyA 1467 UbC-5'UTR ATF4-Noxa-polyA 1710 4xSRE YB_TATA -5'UTR ATF4-Noxa-polyA 1468 UbC-5'UTR AASS-Noxa-polyA 1711 4xSRE YB_TATA -5'UTR AASS-Noxa-polyA 1469 UbC-5'UTR ATF5-Noxa-polyA 1712 4xSRE YB_TATA -5'UTR ATF5-Noxa-polyA 1470 UbC-5'UTR AZIN1-Noxa-polyA 1713 4xSRE YB_TATA -5'UTR AZIN1-Noxa-polyA 1471 UbC-5'UTR BACE1-Noxa-polyA 1714 4xSRE YB_TATA -5'UTR BACE1-Noxa-polyA 1472 UbC-5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa-polyA 1715 4xSRE YB_TATA -5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa-polyA 1473 UbC-5'UTR C/EBPa-Noxa-polyA 1716 4xSRE YB_TATA -5'UTR C/EBPa-Noxa-polyA 1474 UbC-5'UTR CHOP-Noxa-polyA 1717 4xSRE YB_TATA -5'UTR CHOP-Noxa-polyA 1475 UbC-5'UTR CITED2-Noxa-polyA 1718 4xSRE YB_TATA -5'UTR CITED2-Noxa-polyA 1476 UbC-5'UTR CDK16-Noxa-polyA 1719 4xSRE YB_TATA -5'UTR CDK16-Noxa-polyA 1477 UbC-5'UTR CPT1C-Noxa-polyA 1720 4xSRE YB_TATA -5'UTR CPT1C-Noxa-polyA 1478 UbC-5'UTR DEDD2-Noxa-polyA 1721 4xSRE YB_TATA -5'UTR DEDD2-Noxa-polyA 1479 UbC-5'UTR DIAPH1-Noxa-polyA 1722 4xSRE YB_TATA -5'UTR DIAPH1-Noxa-polyA 1480 UbC-5'UTR GADD34-Noxa-polyA 1723 4xSRE YB_TATA -5'UTR GADD34-Noxa-polyA 1481 UbC-5'UTR HOXB2-Noxa-polyA 1724 4xSRE YB_TATA -5'UTR HOXB2-Noxa-polyA 1482 UbC-5'UTR IFDR1-Noxa-polyA 1725 4xSRE YB_TATA -5'UTR IFDR1-Noxa-polyA 1483 UbC-5'UTR JUN-Noxa-polyA 1726 4xSRE YB_TATA -5'UTR JUN-Noxa-polyA 1484 UbC-5'UTR MIEF1-Noxa-polyA 1727 4xSRE YB_TATA -5'UTR MIEF1-Noxa-polyA 1485 UbC-5'UTR NDST1-Noxa-polyA 1728 4xSRE YB_TATA -5'UTR NDST1-Noxa-polyA 1486 UbC-5'UTR PCNXL4-Noxa-polyA 1729 4xSRE YB_TATA -5'UTR PCNXL4-Noxa-polyA 1487 UbC-5'UTR PPP1R15B-Noxa-polyA 1730 4xSRE YB_TATA -5'UTR PPP1R15B-Noxa-polyA 1488 UbC-5'UTR PTP4A1-Noxa-polyA 1731 4xSRE YB_TATA -5'UTR PTP4A1-Noxa-polyA 1489 UbC-5'UTR SELK-Noxa-polyA 1732 4xSRE YB_TATA -5'UTR SELK-Noxa-polyA 1490 UbC-5'UTR TIE2-Noxa-polyA 1733 4xSRE YB_TATA -5'UTR TIE2-Noxa-polyA 1491 UbC-5'UTR TRB3-Noxa-polyA 1734 4xSRE YB_TATA -5'UTR TRB3-Noxa-polyA 1492 UbC-5'UTR UCP2-Noxa-polyA 1735 4xSRE YB_TATA -5'UTR UCP2-Noxa-polyA 1493 UbC-5'UTR VEGFa-Noxa-polyA 1736 4xSRE YB_TATA -5'UTR VEGFa-Noxa-polyA 1494 EF1-a core-5'UTR ATF4-Noxa-polyA 1737 9xHRE YB_TATA -5'UTR ATF4-Noxa-polyA 1495 EF1-a core-5'UTR AASS-Noxa-polyA 1738 9xHRE YB_TATA -5'UTR AASS-Noxa-polyA 1496 EF1-a core-5'UTR ATF5-Noxa-polyA 1739 9xHRE YB_TATA -5'UTR ATF5-Noxa-polyA 1497 EF1-a core-5'UTR AZIN1-Noxa-polyA 1740 9xHRE YB_TATA -5'UTR AZIN1-Noxa-polyA 1498 EF1-a core-5'UTR BACE1-Noxa-polyA 1741 9xHRE YB_TATA -5'UTR BACE1-Noxa-polyA 1499 EF1-a core-5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa-polyA 1742 9xHRE YB_TATA -5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa-polyA 1500 EF1-a core-5'UTR C/EBPa-Noxa-polyA 1743 9xHRE YB_TATA -5'UTR C/EBPa-Noxa-polyA 1501 EF1-a core-5'UTR CHOP-Noxa-polyA 1744 9xHRE YB_TATA -5'UTR CHOP-Noxa-polyA 1502 EF1-a core-5'UTR CITED2-Noxa-polyA 1745 9xHRE YB_TATA -5'UTR CITED2-Noxa-polyA 1503 EF1-a core-5'UTR CDK16-Noxa-polyA 1746 9xHRE YB_TATA -5'UTR CDK16-Noxa-polyA 1504 EF1-a core-5'UTR CPT1C-Noxa-polyA 1747 9xHRE YB_TATA -5'UTR CPT1C-Noxa-polyA 1505 EF1-a core-5'UTR DEDD2-Noxa-polyA 1748 9xHRE YB_TATA -5'UTR DEDD2-Noxa-polyA 1506 EF1-a core-5'UTR DIAPH1-Noxa-polyA 1749 9xHRE YB_TATA -5'UTR DIAPH1-Noxa-polyA 1507 EF1-a core-5'UTR GADD34-Noxa-polyA 1750 9xHRE YB_TATA -5'UTR GADD34-Noxa-polyA 1508 EF1-a core-5'UTR HOXB2-Noxa-polyA 1751 9xHRE YB_TATA -5'UTR HOXB2-Noxa-polyA 1509 EF1-a core-5'UTR IFDR1-Noxa-polyA 1752 9xHRE YB_TATA -5'UTR IFDR1-Noxa-polyA 1510 EF1-a core-5'UTR JUN-Noxa-polyA 1753 9xHRE YB_TATA -5'UTR JUN-Noxa-polyA 1511 EF1-a core-5'UTR MIEF1-Noxa-polyA 1754 9xHRE YB_TATA -5'UTR MIEF1-Noxa-polyA 1512 EF1-a core-5'UTR NDST1-Noxa-polyA 1755 9xHRE YB_TATA -5'UTR NDST1-Noxa-polyA 1513 EF1-a core-5'UTR PCNXL4-Noxa-polyA 1756 9xHRE YB_TATA -5'UTR PCNXL4-Noxa-polyA 1514 EF1-a core-5'UTR PPP1R15B-Noxa-polyA 1757 9xHRE YB_TATA -5'UTR PPP1R15B-Noxa-polyA 1515 EF1-a core-5'UTR PTP4A1-Noxa-polyA 1758 9xHRE YB_TATA -5'UTR PTP4A1-Noxa-polyA 1516 EF1-a core-5'UTR SELK-Noxa-polyA 1759 9xHRE YB_TATA -5'UTR SELK-Noxa-polyA 1517 EF1-a core-5'UTR TIE2-Noxa-polyA 1760 9xHRE YB_TATA -5'UTR TIE2-Noxa-polyA 1518 EF1-a core-5'UTR TRB3-Noxa-polyA 1761 9xHRE YB_TATA -5'UTR TRB3-Noxa-polyA 1519 EF1-a core-5'UTR UCP2-Noxa-polyA 1762 9xHRE YB_TATA -5'UTR UCP2-Noxa-polyA 1520 EF1-a core-5'UTR VEGFa-Noxa-polyA 1763 9xHRE YB_TATA -5'UTR VEGFa-Noxa-polyA 1521 EF1-a long-5'UTR ATF4-Noxa-polyA 1764 GRP78 YB_TATA -5'UTR ATF4-Noxa-polyA 1522 EF1-a long-5'UTR AASS-Noxa-polyA 1765 GRP78 YB_TATA -5'UTR AASS-Noxa-polyA 1523 EF1-a long-5'UTR ATF5-Noxa-polyA 1766 GRP78 YB_TATA -5'UTR ATF5-Noxa-polyA 1524 EF1-a long-5'UTR AZIN1-Noxa-polyA 1767 GRP78 YB_TATA -5'UTR AZIN1-Noxa-polyA 1525 EF1-a long-5'UTR BACE1-Noxa-polyA 1768 GRP78 YB_TATA -5'UTR BACE1-Noxa-polyA 1526 EF1-a long-5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa-polyA 1769 GRP78 YB_TATA -5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa-polyA 1527 EF1-a long-5'UTR C/EBPa-Noxa-polyA 1770 GRP78 YB_TATA -5'UTR C/EBPa-Noxa-polyA 1528 EF1-a long-5'UTR CHOP-Noxa-polyA 1771 GRP78 YB_TATA -5'UTR CHOP-Noxa-polyA 1529 EF1-a long-5'UTR CITED2-Noxa-polyA 1772 GRP78 YB_TATA -5'UTR CITED2-Noxa-polyA 1530 EF1-a long-5'UTR CDK16-Noxa-polyA 1773 GRP78 YB_TATA -5'UTR CDK16-Noxa-polyA 1531 EF1-a long-5'UTR CPT1C-Noxa-polyA 1774 GRP78 YB_TATA -5'UTR CPT1C-Noxa-polyA 1532 EF1-a long-5'UTR DEDD2-Noxa-polyA 1775 GRP78 YB_TATA -5'UTR DEDD2-Noxa-polyA 1533 EF1-a long-5'UTR DIAPH1-Noxa-polyA 1776 GRP78 YB_TATA -5'UTR DIAPH1-Noxa-polyA 1534 EF1-a long-5'UTR GADD34-Noxa-polyA 1777 GRP78 YB_TATA -5'UTR GADD34-Noxa-polyA 1535 EF1-a long-5'UTR HOXB2-Noxa-polyA 1778 GRP78 YB_TATA -5'UTR HOXB2-Noxa-polyA 1536 EF1-a long-5'UTR IFDR1-Noxa-polyA 1779 GRP78 YB_TATA -5'UTR IFDR1-Noxa-polyA 1537 EF1-a long-5'UTR JUN-Noxa-polyA 1780 GRP78 YB_TATA -5'UTR JUN-Noxa-polyA 1538 EF1-a long-5'UTR MIEF1-Noxa-polyA 1781 GRP78 YB_TATA -5'UTR MIEF1-Noxa-polyA 1539 EF1-a long-5'UTR NDST1-Noxa-polyA 1782 GRP78 YB_TATA -5'UTR NDST1-Noxa-polyA 1540 EF1-a long-5'UTR PCNXL4-Noxa-polyA 1783 GRP78 YB_TATA -5'UTR PCNXL4-Noxa-polyA 1541 EF1-a long-5'UTR PPP1R15B-Noxa-polyA 1784 GRP78 YB_TATA -5'UTR PPP1R15B-Noxa-polyA 1542 EF1-a long-5'UTR PTP4A1-Noxa-polyA 1785 GRP78 YB_TATA -5'UTR PTP4A1-Noxa-polyA 1543 EF1-a long-5'UTR SELK-Noxa-polyA 1786 GRP78 YB_TATA -5'UTR SELK-Noxa-polyA 1544 EF1-a long-5'UTR TIE2-Noxa-polyA 1787 GRP78 YB_TATA -5'UTR TIE2-Noxa-polyA 1545 EF1-a long-5'UTR TRB3-Noxa-polyA 1788 GRP78 YB_TATA -5'UTR TRB3-Noxa-polyA 1546 EF1-a long-5'UTR UCP2-Noxa-polyA 1789 GRP78 YB_TATA -5'UTR UCP2-Noxa-polyA 1547 EF1-a long-5'UTR VEGFa-Noxa-polyA 1790 GRP78 YB_TATA -5'UTR VEGFa-Noxa-polyA 1548 hPGK-5'UTR ATF4-Noxa-polyA 1791 miR223-5'UTR ATF4-Noxa-polyA 1549 hPGK-5'UTR AASS-Noxa-polyA 1792 miR223-5'UTR AASS-Noxa-polyA 1550 hPGK-5'UTR ATF5-Noxa-polyA 1793 miR223-5'UTR ATF5-Noxa-polyA 1551 hPGK-5'UTR AZIN1-Noxa-polyA 1794 miR223-5'UTR AZIN1-Noxa-polyA 1552 hPGK-5'UTR BACE1-Noxa-polyA 1795 miR223-5'UTR BACE1-Noxa-polyA 1553 hPGK-5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa-polyA 1796 miR223-5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa-polyA 1554 hPGK-5'UTR C/EBPa-Noxa-polyA 1797 miR223-5'UTR C/EBPa-Noxa-polyA 1555 hPGK-5'UTR CHOP-Noxa-polyA 1798 miR223-5'UTR CHOP-Noxa-polyA 1556 hPGK-5'UTR CITED2-Noxa-polyA 1799 miR223-5'UTR CITED2-Noxa-polyA 1557 hPGK-5'UTR CDK16-Noxa-polyA 1800 miR223-5'UTR CDK16-Noxa-polyA 1558 hPGK-5'UTR CPT1C-Noxa-polyA 1801 miR223-5'UTR CPT1C-Noxa-polyA 1559 hPGK-5'UTR DEDD2-Noxa-polyA 1802 miR223-5'UTR DEDD2-Noxa-polyA 1560 hPGK-5'UTR DIAPH1-Noxa-polyA 1803 miR223-5'UTR DIAPH1-Noxa-polyA 1561 hPGK-5'UTR GADD34-Noxa-polyA 1804 miR223-5'UTR GADD34-Noxa-polyA 1562 hPGK-5'UTR HOXB2-Noxa-polyA 1805 miR223-5'UTR HOXB2-Noxa-polyA 1563 hPGK-5'UTR IFDR1-Noxa-polyA 1806 miR223-5'UTR IFDR1-Noxa-polyA 1564 hPGK-5'UTR JUN-Noxa-polyA 1807 miR223-5'UTR JUN-Noxa-polyA 1565 hPGK-5'UTR MIEF1-Noxa-polyA 1808 miR223-5'UTR MIEF1-Noxa-polyA 1566 hPGK-5'UTR NDST1-Noxa-polyA 1809 miR223-5'UTR NDST1-Noxa-polyA 1567 hPGK-5'UTR PCNXL4-Noxa-polyA 1810 miR223-5'UTR PCNXL4-Noxa-polyA 1568 hPGK-5'UTR PPP1R15B-Noxa-polyA 1811 miR223-5'UTR PPP1R15B-Noxa-polyA 1569 hPGK-5'UTR PTP4A1-Noxa-polyA 1812 miR223-5'UTR PTP4A1-Noxa-polyA 1570 hPGK-5'UTR SELK-Noxa-polyA 1813 miR223-5'UTR SELK-Noxa-polyA 1571 hPGK-5'UTR TIE2-Noxa-polyA 1814 miR223-5'UTR TIE2-Noxa-polyA 1572 hPGK-5'UTR TRB3-Noxa-polyA 1815 miR223-5'UTR TRB3-Noxa-polyA 1573 hPGK-5'UTR UCP2-Noxa-polyA 1816 miR223-5'UTR UCP2-Noxa-polyA 1574 hPGK-5'UTR VEGFa-Noxa-polyA 1817 miR223-5'UTR VEGFa-Noxa-polyA 1575 CAGG-5'UTR ATF4-Noxa-polyA 1818 miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR ATF4-Noxa-polyA 1576 CAGG-5'UTR AASS-Noxa-polyA 1819 miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR AASS-Noxa-polyA 1577 CAGG-5'UTR ATF5-Noxa-polyA 1820 miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR ATF5-Noxa-polyA 1578 CAGG-5'UTR AZIN1-Noxa-polyA 1821 miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR AZIN1-Noxa-polyA 1579 CAGG-5'UTR BACE1-Noxa-polyA 1822 miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR BACE1-Noxa-polyA 1580 CAGG-5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa-polyA 1823 miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa-polyA 1581 CAGG-5'UTR C/EBPa-Noxa-polyA 1824 miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR C/EBPa-Noxa-polyA 1582 CAGG-5'UTR CHOP-Noxa-polyA 1825 miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR CHOP-Noxa-polyA 1583 CAGG-5'UTR CITED2-Noxa-polyA 1826 miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR CITED2-Noxa-polyA 1584 CAGG-5'UTR CDK16-Noxa-polyA 1827 miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR CDK16-Noxa-polyA 1585 CAGG-5'UTR CPT1C-Noxa-polyA 1828 miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR CPT1C-Noxa-polyA 1586 CAGG-5'UTR DEDD2-Noxa-polyA 1829 miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR DEDD2-Noxa-polyA 1587 CAGG-5'UTR DIAPH1-Noxa-polyA 1830 miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR DIAPH1-Noxa-polyA 1588 CAGG-5'UTR GADD34-Noxa-polyA 1831 miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR GADD34-Noxa-polyA 1589 CAGG-5'UTR HOXB2-Noxa-polyA 1832 miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR HOXB2-Noxa-polyA 1590 CAGG-5'UTR IFDR1-Noxa-polyA 1833 miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR IFDR1-Noxa-polyA 1591 CAGG-5'UTR JUN-Noxa-polyA 1834 miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR JUN-Noxa-polyA 1592 CAGG-5'UTR MIEF1-Noxa-polyA 1835 miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR MIEF1-Noxa-polyA 1593 CAGG-5'UTR NDST1-Noxa-polyA 1836 miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR NDST1-Noxa-polyA 1594 CAGG-5'UTR PCNXL4-Noxa-polyA 1837 miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR PCNXL4-Noxa-polyA 1595 CAGG-5'UTR PPP1R15B-Noxa-polyA 1838 miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR PPP1R15B-Noxa-polyA 1596 CAGG-5'UTR PTP4A1-Noxa-polyA 1839 miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR PTP4A1-Noxa-polyA 1597 CAGG-5'UTR SELK-Noxa-polyA 1840 miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR SELK-Noxa-polyA 1598 CAGG-5'UTR TIE2-Noxa-polyA 1841 miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR TIE2-Noxa-polyA 1599 CAGG-5'UTR TRB3-Noxa-polyA 1842 miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR TRB3-Noxa-polyA 1600 CAGG-5'UTR UCP2-Noxa-polyA 1843 miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR UCP2-Noxa-polyA 1601 CAGG-5'UTR VEGFa-Noxa-polyA 1844 miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR VEGFa-Noxa-polyA 1602 RSV-5'UTR ATF4-Noxa-polyA 1603 RSV-5'UTR AASS-Noxa-polyA 1604 RSV-5'UTR ATF5-Noxa-polyA 1605 RSV-5'UTR AZIN1-Noxa-polyA 1606 RSV-5'UTR BACE1-Noxa-polyA 1607 RSV-5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa-polyA 1608 RSV-5'UTR C/EBPa-Noxa-polyA 1609 RSV-5'UTR CHOP-Noxa-polyA 1610 RSV-5'UTR CITED2-Noxa-polyA 1611 RSV-5'UTR CDK16-Noxa-polyA 1612 RSV-5'UTR CPT1C-Noxa-polyA 1613 RSV-5'UTR DEDD2-Noxa-polyA 1614 RSV-5'UTR DIAPH1-Noxa-polyA 1615 RSV-5'UTR GADD34-Noxa-polyA 1616 RSV-5'UTR HOXB2-Noxa-polyA 1617 RSV-5'UTR IFDR1-Noxa-polyA 1618 RSV-5'UTR JUN-Noxa-polyA 1619 RSV-5'UTR MIEF1-Noxa-polyA 1620 RSV-5'UTR NDST1-Noxa-polyA 1621 RSV-5'UTR PCNXL4-Noxa-polyA 1622 RSV-5'UTR PPP1R15B-Noxa-polyA 1623 RSV-5'UTR PTP4A1-Noxa-polyA 1624 RSV-5'UTR SELK-Noxa-polyA 1625 RSV-5'UTR TIE2-Noxa-polyA 1626 RSV-5'UTR TRB3-Noxa-polyA 1627 RSV-5'UTR UCP2-Noxa-polyA 1628 RSV-5'UTR VEGFa-Noxa-polyA 1629 SFFV-5'UTR ATF4-Noxa-polyA 1630 SFFV-5'UTR AASS-Noxa-polyA 1631 SFFV-5'UTR ATF5-Noxa-polyA 1632 SFFV-5'UTR AZIN1-Noxa-polyA 1633 SFFV-5'UTR BACE1-Noxa-polyA 1634 SFFV-5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa-polyA 1635 SFFV-5'UTR C/EBPa-Noxa-polyA 1636 SFFV-5'UTR CHOP-Noxa-polyA 1637 SFFV-5'UTR CITED2-Noxa-polyA 1638 SFFV-5'UTR CDK16-Noxa-polyA 1639 SFFV-5'UTR CPT1C-Noxa-polyA 1640 SFFV-5'UTR DEDD2-Noxa-polyA 1641 SFFV-5'UTR DIAPH1-Noxa-polyA 1642 SFFV-5'UTR GADD34-Noxa-polyA 1643 SFFV-5'UTR HOXB2-Noxa-polyA 1644 SFFV-5'UTR IFDR1-Noxa-polyA 1645 SFFV-5'UTR JUN-Noxa-polyA 1646 SFFV-5'UTR MIEF1-Noxa-polyA 1647 SFFV-5'UTR NDST1-Noxa-polyA 1648 SFFV-5'UTR PCNXL4-Noxa-polyA 1649 SFFV-5'UTR PPP1R15B-Noxa-polyA 1650 SFFV-5'UTR PTP4A1-Noxa-polyA 1651 SFFV-5'UTR SELK-Noxa-polyA 1652 SFFV-5'UTR TIE2-Noxa-polyA 1653 SFFV-5'UTR TRB3-Noxa-polyA 1654 SFFV-5'UTR UCP2-Noxa-polyA 1655 SFFV-5'UTR VEGFa-Noxa-polyA Tableau 8. Liste des cassettes d’expression comprenant un 5’UTR et une queue polyA Au vu de ce qui précède, on comprend également que l’invention met en œuvre le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression comprend en outre une séquence codante ou non codante ayant des propriétés régulatrices au niveau post -transcriptionnel et une queue polyA, et dont l’orientation 5’ vers 3’ (5’ > 3’) de la transcription est inversée par rapport à l’orientation 5’ vers 3’ de la transcription dudit génome lentiviral, ledit génome vecteur étant choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 1 877 à 2 740. En particulier, l’invention a pour objet le génome vecteur tel que décrit ci-dessus, dans lequel ladite cassette d’expression comprend en outre une séquence codante ou non codante ayant des propriétés régulatrices au niveau post -transcriptionnel et une queue polyA, et dont l’orientation 5’ vers 3’ (5’ > 3’) de la transcription est inversée par rapport à l’orientation 5’ vers 3’ de la transcription dudit génome lentiviral, ledit génome vecteur étant choisi parmi les SEQ ID NOs : 1 877 à 2 740 (voir Tableau 9). SEQ ID NO : GENOME VECTEUR « INVERSE » (SIN) SEQ ID NO : GENOME VECTEUR « INVERSE » (RSV) 1877 LVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR ATF4-Noxa-polyA 2309 LVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR ATF4-Noxa-polyA 1878 LVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR AASS-Noxa-polyA 2310 LVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR AASS-Noxa-polyA 1879 LVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR ATF5-Noxa-polyA 2311 LVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR ATF5-Noxa-polyA 1880 LVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR AZIN1-Noxa-polyA 2312 LVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR AZIN1-Noxa-polyA 1881 LVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR BACE1-Noxa-polyA 2313 LVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR BACE1-Noxa-polyA 1882 LVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa-polyA 2314 LVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa-polyA 1883 LVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR C/EBPa-Noxa-polyA 2315 LVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR C/EBPa-Noxa-polyA 1884 LVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR CHOP-Noxa-polyA 2316 LVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR CHOP-Noxa-polyA 1885 LVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR CITED2-Noxa-polyA 2317 LVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR CITED2-Noxa-polyA 1886 LVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR CDK16-Noxa-polyA 2318 LVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR CDK16-Noxa-polyA 1887 LVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR CPT1C-Noxa-polyA 2319 LVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR CPT1C-Noxa-polyA 1888 LVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR DEDD2-Noxa-polyA 2320 LVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR DEDD2-Noxa-polyA 1889 LVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR DIAPH1-Noxa-polyA 2321 LVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR DIAPH1-Noxa-polyA 1890 LVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR GADD34-Noxa-polyA 2322 LVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR GADD34-Noxa-polyA 1891 LVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR HOXB2-Noxa-polyA 2323 LVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR HOXB2-Noxa-polyA 1892 LVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR IFDR1-Noxa-polyA 2324 LVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR IFDR1-Noxa-polyA 1893 LVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR JUN-Noxa-polyA 2325 LVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR JUN-Noxa-polyA 1894 LVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR MIEF1-Noxa-polyA 2326 LVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR MIEF1-Noxa-polyA 1895 LVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR NDST1-Noxa-polyA 2327 LVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR NDST1-Noxa-polyA 1896 LVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR PCNXL4-Noxa-polyA 2328 LVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR PCNXL4-Noxa-polyA 1897 LVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR PPP1R15B-Noxa-polyA 2329 LVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR PPP1R15B-Noxa-polyA 1898 LVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR PTP4A1-Noxa-polyA 2330 LVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR PTP4A1-Noxa-polyA 1899 LVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR SELK-Noxa-polyA 2331 LVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR SELK-Noxa-polyA 1900 LVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR TIE2-Noxa-polyA 2332 LVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR TIE2-Noxa-polyA 1901 LVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR TRB3-Noxa-polyA 2333 LVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR TRB3-Noxa-polyA 1902 LVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR UCP2-Noxa-polyA 2334 LVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR UCP2-Noxa-polyA 1903 LVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR VEGFa-Noxa-polyA 2335 LVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR VEGFa-Noxa-polyA 1904 LVi G2 (SIN)-CMV-5'UTR ATF4-Noxa-polyA 2336 LVi G3 (RSV)-CMV-5'UTR ATF4-Noxa-polyA 1905 LVi G2 (SIN)-CMV-5'UTR AASS-Noxa-polyA 2337 LVi G3 (RSV)-CMV-5'UTR AASS-Noxa-polyA 1906 LVi G2 (SIN)-CMV-5'UTR ATF5-Noxa-polyA 2338 LVi G3 (RSV)-CMV-5'UTR ATF5-Noxa-polyA 1907 LVi G2 (SIN)-CMV-5'UTR AZIN1-Noxa-polyA 2339 LVi G3 (RSV)-CMV-5'UTR AZIN1-Noxa-polyA 1908 LVi G2 (SIN)-CMV-5'UTR 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(RSV)-miR223-5'UTR MIEF1-Noxa-polyA 2273 LVi G2 (SIN)-miR223-5'UTR NDST1-Noxa-polyA 2705 LVi G3 (RSV)-miR223-5'UTR NDST1-Noxa-polyA 2274 LVi G2 (SIN)-miR223-5'UTR PCNXL4-Noxa-polyA 2706 LVi G3 (RSV)-miR223-5'UTR PCNXL4-Noxa-polyA 2275 LVi G2 (SIN)-miR223-5'UTR PPP1R15B-Noxa-polyA 2707 LVi G3 (RSV)-miR223-5'UTR PPP1R15B-Noxa-polyA 2276 LVi G2 (SIN)-miR223-5'UTR PTP4A1-Noxa-polyA 2708 LVi G3 (RSV)-miR223-5'UTR PTP4A1-Noxa-polyA 2277 LVi G2 (SIN)-miR223-5'UTR SELK-Noxa-polyA 2709 LVi G3 (RSV)-miR223-5'UTR SELK-Noxa-polyA 2278 LVi G2 (SIN)-miR223-5'UTR TIE2-Noxa-polyA 2710 LVi G3 (RSV)-miR223-5'UTR TIE2-Noxa-polyA 2279 LVi G2 (SIN)-miR223-5'UTR TRB3-Noxa-polyA 2711 LVi G3 (RSV)-miR223-5'UTR TRB3-Noxa-polyA 2280 LVi G2 (SIN)-miR223-5'UTR UCP2-Noxa-polyA 2712 LVi G3 (RSV)-miR223-5'UTR UCP2-Noxa-polyA 2281 LVi G2 (SIN)-miR223-5'UTR VEGFa-Noxa-polyA 2713 LVi G3 (RSV)-miR223-5'UTR VEGFa-Noxa-polyA 2282 LVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR ATF4-Noxa-polyA 2714 LVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR ATF4-Noxa-polyA 2283 LVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR AASS-Noxa-polyA 2715 LVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR AASS-Noxa-polyA 2284 LVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR ATF5-Noxa-polyA 2716 LVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR ATF5-Noxa-polyA 2285 LVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR AZIN1-Noxa-polyA 2717 LVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR AZIN1-Noxa-polyA 2286 LVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR BACE1-Noxa-polyA 2718 LVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR BACE1-Noxa-polyA 2287 LVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa-polyA 2719 LVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa-polyA 2288 LVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR C/EBPa-Noxa-polyA 2720 LVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR C/EBPa-Noxa-polyA 2289 LVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR CHOP-Noxa-polyA 2721 LVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR CHOP-Noxa-polyA 2290 LVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR CITED2-Noxa-polyA 2722 LVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR CITED2-Noxa-polyA 2291 LVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR CDK16-Noxa-polyA 2723 LVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR CDK16-Noxa-polyA 2292 LVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR CPT1C-Noxa-polyA 2724 LVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR CPT1C-Noxa-polyA 2293 LVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR DEDD2-Noxa-polyA 2725 LVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR DEDD2-Noxa-polyA 2294 LVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR DIAPH1-Noxa-polyA 2726 LVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR DIAPH1-Noxa-polyA 2295 LVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR GADD34-Noxa-polyA 2727 LVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR GADD34-Noxa-polyA 2296 LVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR HOXB2-Noxa-polyA 2728 LVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR HOXB2-Noxa-polyA 2297 LVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR IFDR1-Noxa-polyA 2729 LVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR IFDR1-Noxa-polyA 2298 LVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR JUN-Noxa-polyA 2730 LVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR JUN-Noxa-polyA 2299 LVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR MIEF1-Noxa-polyA 2731 LVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR MIEF1-Noxa-polyA 2300 LVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR NDST1-Noxa-polyA 2732 LVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR NDST1-Noxa-polyA 2301 LVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR PCNXL4-Noxa-polyA 2733 LVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR PCNXL4-Noxa-polyA 2302 LVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR PPP1R15B-Noxa-polyA 2734 LVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR PPP1R15B-Noxa-polyA 2303 LVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR PTP4A1-Noxa-polyA 2735 LVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR PTP4A1-Noxa-polyA 2304 LVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR SELK-Noxa-polyA 2736 LVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR SELK-Noxa-polyA 2305 LVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR TIE2-Noxa-polyA 2737 LVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR TIE2-Noxa-polyA 2306 LVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR TRB3-Noxa-polyA 2738 LVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR TRB3-Noxa-polyA 2307 LVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR UCP2-Noxa-polyA 2739 LVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR UCP2-Noxa-polyA 2308 LVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR VEGFa-Noxa-polyA 2740 LVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR VEGFa-Noxa-polyA Tableau 9. Liste des génomes vecteurs « inversés » comprenant un 5’UTR et une queue polyA Selon un autre aspect, l’invention a pour objet une méthode de production de vecteurs lentiviraux comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus, ladite méthode comprenant au moins les étapes : a. de co-transfection d’une cellule eucaryote animale avec : i. un plasmide comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer ; ii. un plasmide comprenant une protéine d’enveloppe virale et les moyens de l’exprimer ; et iii un plasmide comprenant les protéines de structures et les enzymes du VIH-1, et les moyens de l’exprimer, pour obtenir une cellule eucaryote animale transfectée ; b. de culture de ladite cellule eucaryote animale transfectée pour permettre la production de vecteurs lentiviraux comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus ; et c. de récolte et de purification desdits vecteurs lentiviraux. Une telle méthode est illustrée dans les exemples ci-après et est accessible à l’homme du métier au vu de la littérature à sa disposition ( e.g. Zennou et al. Nat Biotechnol . 2001 May; 19(5):446-50) ). Néanmoins et aux fins d’illustrations, il est précisé que : ladite cellule eucaryote animale peut être une cellule appartenant à une lignée cellulaire choisie parmi : HEK 293T, HEK 293, CHO, GS-CHO, Free style 293-F cells (FS293), Viral Production Cells (VPC and VPC 2.0), COS-1, HeLa, PS5.8 et PS46.2 ; ledit plasmide comprenant une protéine d’enveloppe virale et les moyens de l’exprimer peut être choisi parmi les plasmides : pHCMV-VSV (SEQ ID NO : 4 595), pHCMV-Mokola, pHCMV-RabiesG, pHCMV-AmphoEnv, pHCMV-LCMV-WE, pHCMV-LCMV-Arm53b et pHCMV-10A1 (Sena-Esteves M et aL . Optimized large-scale production of high titer lentivirus vector pseudotypes. J Virol Methods. 2004 Dec 15;122(2):131-9); et ledit plasmide comprenant les protéines de structures et les enzymes du VIH-1, et les moyens de l’exprimer peut être choisi parmi les plasmides : p8.92 (SEQ ID NO : 4 596), p8.92 (IN D64V) (SEQ ID NO : 4 597), psPAX2 (SEQ ID NO : 4 598), pMDLg/pRRE (SEQ ID NO : 4 599) et pRSV-Rev (SEQ ID NO : 4 600). Aux fins d’illustrations et de façon non limitative, il est également fourni le protocole suivant : Des cellules ( e.g. HEK 293T) ont été ensemencées sur des supports adaptés à la culture cellulaire et de façon à atteindre une confluence de 50 à 60% après 24 heures de culture. Le lendemain, les cellules ont été co-transfectées, par la méthode de précipitation au phosphate de calcium, avec le plasmide codant le génome lentiviral et deux plasmides transcomplémentant codant pour les enzymes et protéines structurelles du VIH-1 (p8.9) et la glycoprotéine d’enveloppe du virus de la stomatite vésiculaire (pVSVg). La co-transfection a été réalisée au ratio plasmidique 2 : 2 : 1. Les cellules transfectées ont été cultivées 5 heures au contact du précipité puis le milieu de culture a été renouvelé. Le surnageant contenant les particules lentivirales a été récolté 48 heures plus tard. La suspension lentivirale a été traitée à la DNAse I pour éliminer les plasmides persistants, filtrée (porosité de la membrane 0,2 µm) puis ultra-centrifugée à 60 000g pendant 90 minutes à 4°C. Les culots de particules ont été repris dans un volume de tampon phosphate salin (PBS) correspondant à une concentration d’un facteur 1 000. Les suspensions obtenues ont été aliquotées et conservées à -80°C jusqu’à utilisation. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale appartient à une lignée cellulaire choisie parmi : HEK 293T, HEK 293, CHO, GS-CHO, Free style 293-F cells (FS293), Viral Production Cells (VPC and VPC 2.0), COS-1, HeLa, PS5.8 et PS46.2. Avantageusement, l’invention a pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale appartient à la lignée cellulaire HEK 293T. Comme mentionné ci-dessus, alors que la protéine Noxa est un transgène toxique ou suicide, c’est-à-dire que son expression induit la mort cellulaire de la cellule qui l’exprime, son expression dans le contexte de production du vecteur lentiviral de l’invention n’interfère étonnamment pas avec celle-ci. C’est-à-dire qu’elle n’entraîne pas la mort de la cellule productrice ( e.g. HEK 293T) du vecteur lentiviral de l’invention, alors qu’elle entraîne celle de la cellule cible génétiquement modifiée ( e.g. lymphocyte T). Avec les outils de l’invention développé par les inventeurs, les manques actuels relevés par le corps médical en termes d’outils de thérapie génique sont donc pleinement comblés. Sur ce point, l’invention constitue une réelle percée technologique. Dans l’invention, il est bien sûr entendu que « vecteur lentiviral » désigne une particule lentivirale recombinante obtenue grâce au plasmide comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer, lequel permet de produire la particule (lenti-)virale de l’invention. Celui-ci comprend ledit génome vecteur encapsidé et/ou enveloppé. Il est efficace pour s’introduire dans la cellule, il est non réplicatif et il conduit soit à l’intégration (ciblée ou non) dudit génome vecteur dans le génome d’une cellule infectée, soit à la présence d’un épisome non intégré dans le génome cellulaire. Le terme « plasmide » désigne une molécule d’ADN circulaire double brin, qui possède obligatoirement une origine de réplication bactérienne et accessoirement du virus SV40, afin qu’il puisse se répliquer de manière autonome, e.g. , en E. coli pour son amplification et, e.g. , dans la cellule HEK 293T après transfection, et un gène de sélection pour qu’il ne soit pas perdu lors de son amplification bactérienne au fil des multiplications cellulaires. Dans l’invention, celui mentionné en i. comprend en outre l’acide nucléique dudit génome vecteur de l’invention et les moyens de l’exprimer. C’est-à-dire, les éléments génétiques nécessaire à l’expression du génome vecteur de l’invention et la production d’un vecteur lentiviral selon l’invention. Il en va de même pour les autres plasmides ii. et iii. lesquels permettent respectivement d’exprimer une protéine d’enveloppe virale, et les protéines de structures et les enzymes du VIH-1. Avantageusement, il convient de noter l’orientation 5’ vers 3’ du promoteur cryptique de l’origine de réplication bactérienne du plasmide mentionné en i. est inversée par rapport à l’orientation 5’ vers 3’ de la transcription de ladite cassette d’expression. Ce plasmide comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus et les moyens de l’exprimer peut être un plasmide pLV-SIN ou un plasmide pLV-RSV. S’il s’agit d’un plasmide pLV SIN, l’acide nucléique de celui-ci a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 2 741. En particulier, le plasmide pLV SIN a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 2 741. A noter que l’insertion dudit génome vecteur dans ledit plasmide pLV-SIN de séquence SEQ ID NO : 2 741 peut être ou est réalisée au niveau des nucléotides 4 939 et 4 940 de cette SEQ ID NO : 2 741. C’est-à-dire que ledit génome vecteur se situe dans ce cas entre les séquences SEQ ID NOs : 2 742 et 2 743. S’il s’agit d’un plasmide pLV RSV, l’acide nucléique de celui-ci a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 2 744. En particulier, le plasmide pLV RSV a une séquence correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 2 744. A noter que l’insertion dudit génome vecteur dans ledit plasmide pLV-RSV de séquence SEQ ID NO : 2 744 peut être ou est réalisée au niveau des nucléotides 234 et 235 de cette SEQ ID NO : 2 744. C’est-à-dire que ledit génome vecteur se situe dans ce cas entre les séquences SEQ ID NOs : 2 745 et 2 746. Au vu de ce qui précède, on comprend que selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ledit plasmide i. tel que décrit ci-dessus est choisi parmi les séquences ayant 80% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 2 747 à 2 778, 2 779 à 3 642, 3 643 à 3 674 et 3 675 à 4 538. Avantageusement, l’invention a pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ledit plasmide i. tel que décrit ci-dessus est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 2 747 à 2 778 (voir Tableau 10 – plasmide « sens » sans 5’UTR) ; 2 779 à 3 642 (voir Tableau 11– plasmide « sens » avec 5’UTR) ; 3 643 à 3 674 (voir Tableau 12 – plasmide « inversé » sans 5’UTR) ; et 3 675 à 4 538 (voir Tableau 13 – plasmide « inversé » avec 5’UTR). A noter que les plasmides en tant que tels cités ci-après font également partie intégrante de l’invention et en constituent un des objets, tout comme leur utilisation pour produire un vecteur lentiviral comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus. SEQ ID NO : PLASMIDE « SENS » (SIN) SEQ ID NO : PLASMIDE « SENS » (RSV) 2747 pLV G2 (SIN)-SV40-Noxa 2763 pLV G3 (RSV)-SV40-Noxa 2748 pLV G2 (SIN)-CMV-Noxa 2764 pLV G3 (RSV)-CMV-Noxa 2749 pLV G2 (SIN)-UbC-Noxa 2765 pLV G3 (RSV)-UbC-Noxa 2750 pLV G2 (SIN)-EF1-a core-Noxa 2766 pLV G3 (RSV)-EF1-a core-Noxa 2751 pLV G2 (SIN)-EF1-a long-Noxa 2767 pLV G3 (RSV)-EF1-a long-Noxa 2752 pLV G2 (SIN)-hPGK-Noxa 2768 pLV G3 (RSV)-hPGK-Noxa 2753 pLV G2 (SIN)-CAGG-Noxa 2769 pLV G3 (RSV)-CAGG-Noxa 2754 pLV G2 (SIN)-RSV-Noxa 2770 pLV G3 (RSV)-RSV-Noxa 2755 pLV G2 (SIN)-SFFV-Noxa 2771 pLV G3 (RSV)-SFFV-Noxa 2756 pLV G2 (SIN)-2xAARE YB_TATA -Noxa 2772 pLV G3 (RSV)-2xAARE YB_TATA -Noxa 2757 pLV G2 (SIN)-2xAARE TK -Noxa 2773 pLV G3 (RSV)-2xAARE TK -Noxa 2758 pLV G2 (SIN)-4xSRE YB_TATA -Noxa 2774 pLV G3 (RSV)-4xSRE YB_TATA -Noxa 2759 pLV G2 (SIN)-9xHRE YB_TATA -Noxa 2775 pLV G3 (RSV)-9xHRE YB_TATA -Noxa 2760 pLV G2 (SIN)-GRP78 YB_TATA -Noxa 2776 pLV G3 (RSV)-GRP78 YB_TATA -Noxa 2761 pLV G2 (SIN)-miR223-Noxa 2777 pLV G3 (RSV)-miR223-Noxa 2762 pLV G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -Noxa 2778 pLV G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -Noxa Tableau 10. Liste des plasmides « sens » SEQ ID NO : PLASMIDE « SENS » + 5’UTR (SIN) SEQ ID NO : PLASMIDE « SENS » + 5’UTR (RSV) 2779 pLV G2 (SIN)-SV40-5'UTR ATF4-Noxa 3211 pLV G3 (RSV)-SV40-5'UTR ATF4-Noxa 2780 pLV G2 (SIN)-SV40-5'UTR AASS-Noxa 3212 pLV G3 (RSV)-SV40-5'UTR AASS-Noxa 2781 pLV G2 (SIN)-SV40-5'UTR ATF5-Noxa 3213 pLV G3 (RSV)-SV40-5'UTR ATF5-Noxa 2782 pLV G2 (SIN)-SV40-5'UTR AZIN1-Noxa 3214 pLV G3 (RSV)-SV40-5'UTR AZIN1-Noxa 2783 pLV G2 (SIN)-SV40-5'UTR BACE1-Noxa 3215 pLV G3 (RSV)-SV40-5'UTR BACE1-Noxa 2784 pLV G2 (SIN)-SV40-5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa 3216 pLV G3 (RSV)-SV40-5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa 2785 pLV G2 (SIN)-SV40-5'UTR C/EBPa-Noxa 3217 pLV G3 (RSV)-SV40-5'UTR C/EBPa-Noxa 2786 pLV G2 (SIN)-SV40-5'UTR CHOP-Noxa 3218 pLV G3 (RSV)-SV40-5'UTR CHOP-Noxa 2787 pLV G2 (SIN)-SV40-5'UTR CITED2-Noxa 3219 pLV G3 (RSV)-SV40-5'UTR CITED2-Noxa 2788 pLV G2 (SIN)-SV40-5'UTR CDK16-Noxa 3220 pLV G3 (RSV)-SV40-5'UTR CDK16-Noxa 2789 pLV G2 (SIN)-SV40-5'UTR CPT1C-Noxa 3221 pLV G3 (RSV)-SV40-5'UTR 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(RSV)-miR223-5'UTR IFDR1-Noxa 3173 pLV G2 (SIN)-miR223-5'UTR JUN-Noxa 3605 pLV G3 (RSV)-miR223-5'UTR JUN-Noxa 3174 pLV G2 (SIN)-miR223-5'UTR MIEF1-Noxa 3606 pLV G3 (RSV)-miR223-5'UTR MIEF1-Noxa 3175 pLV G2 (SIN)-miR223-5'UTR NDST1-Noxa 3607 pLV G3 (RSV)-miR223-5'UTR NDST1-Noxa 3176 pLV G2 (SIN)-miR223-5'UTR PCNXL4-Noxa 3608 pLV G3 (RSV)-miR223-5'UTR PCNXL4-Noxa 3177 pLV G2 (SIN)-miR223-5'UTR PPP1R15B-Noxa 3609 pLV G3 (RSV)-miR223-5'UTR PPP1R15B-Noxa 3178 pLV G2 (SIN)-miR223-5'UTR PTP4A1-Noxa 3610 pLV G3 (RSV)-miR223-5'UTR PTP4A1-Noxa 3179 pLV G2 (SIN)-miR223-5'UTR SELK-Noxa 3611 pLV G3 (RSV)-miR223-5'UTR SELK-Noxa 3180 pLV G2 (SIN)-miR223-5'UTR TIE2-Noxa 3612 pLV G3 (RSV)-miR223-5'UTR TIE2-Noxa 3181 pLV G2 (SIN)-miR223-5'UTR TRB3-Noxa 3613 pLV G3 (RSV)-miR223-5'UTR TRB3-Noxa 3182 pLV G2 (SIN)-miR223-5'UTR UCP2-Noxa 3614 pLV G3 (RSV)-miR223-5'UTR UCP2-Noxa 3183 pLV G2 (SIN)-miR223-5'UTR VEGFa-Noxa 3615 pLV G3 (RSV)-miR223-5'UTR VEGFa-Noxa 3184 pLV G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR 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pLV G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR CDK16-Noxa 3194 pLV G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR CPT1C-Noxa 3626 pLV G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR CPT1C-Noxa 3195 pLV G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR DEDD2-Noxa 3627 pLV G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR DEDD2-Noxa 3196 pLV G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR DIAPH1-Noxa 3628 pLV G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR DIAPH1-Noxa 3197 pLV G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR GADD34-Noxa 3629 pLV G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR GADD34-Noxa 3198 pLV G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR HOXB2-Noxa 3630 pLV G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR HOXB2-Noxa 3199 pLV G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR IFDR1-Noxa 3631 pLV G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR IFDR1-Noxa 3200 pLV G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR JUN-Noxa 3632 pLV G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR JUN-Noxa 3201 pLV G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR MIEF1-Noxa 3633 pLV G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR MIEF1-Noxa 3202 pLV G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR NDST1-Noxa 3634 pLV G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR NDST1-Noxa 3203 pLV G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR PCNXL4-Noxa 3635 pLV G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR PCNXL4-Noxa 3204 pLV G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR PPP1R15B-Noxa 3636 pLV G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR PPP1R15B-Noxa 3205 pLV G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR PTP4A1-Noxa 3637 pLV G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR PTP4A1-Noxa 3206 pLV G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR SELK-Noxa 3638 pLV G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR SELK-Noxa 3207 pLV G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR TIE2-Noxa 3639 pLV G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR TIE2-Noxa 3208 pLV G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR TRB3-Noxa 3640 pLV G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR TRB3-Noxa 3209 pLV G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR UCP2-Noxa 3641 pLV G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR UCP2-Noxa 3210 pLV G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR VEGFa-Noxa 3642 pLV G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR VEGFa-Noxa Tableau 11. Liste des plasmides « sens » + 5’UTR SEQ ID NO : PLASMIDE « INVERSE » (SIN) SEQ ID NO : PLASMIDE « INVERSE » (RSV) 3643 pLVi G2 (SIN)-SV40-Noxa-polyA 3659 pLVi G3 (RSV)-SV40-Noxa-polyA 3644 pLVi G2 (SIN)-CMV-Noxa-polyA 3660 pLVi G3 (RSV)-CMV-Noxa-polyA 3645 pLVi G2 (SIN)-UbC-Noxa-polyA 3661 pLVi G3 (RSV)-UbC-Noxa-polyA 3646 pLVi G2 (SIN)-EF1-a core-Noxa-polyA 3662 pLVi G3 (RSV)-EF1-a core-Noxa-polyA 3647 pLVi G2 (SIN)-EF1-a long-Noxa-polyA 3663 pLVi G3 (RSV)-EF1-a long-Noxa-polyA 3648 pLVi G2 (SIN)-hPGK-Noxa-polyA 3664 pLVi G3 (RSV)-hPGK-Noxa-polyA 3649 pLVi G2 (SIN)-CAGG-Noxa-polyA 3665 pLVi G3 (RSV)-CAGG-Noxa-polyA 3650 pLVi G2 (SIN)-RSV-Noxa-polyA 3666 pLVi G3 (RSV)-RSV-Noxa-polyA 3651 pLVi G2 (SIN)-SFFV-Noxa-polyA 3667 pLVi G3 (RSV)-SFFV-Noxa-polyA 3652 pLVi G2 (SIN)-2xAARE YB_TATA -Noxa-polyA 3668 pLVi G3 (RSV)-2xAARE YB_TATA -Noxa-polyA 3653 pLVi G2 (SIN)-2xAARE TK -Noxa-polyA 3669 pLVi G3 (RSV)-2xAARE TK -Noxa-polyA 3654 pLVi G2 (SIN)-4xSRE YB_TATA -Noxa-polyA 3670 pLVi G3 (RSV)-4xSRE YB_TATA -Noxa-polyA 3655 pLVi G2 (SIN)-9xHRE YB_TATA -Noxa-polyA 3671 pLVi G3 (RSV)-9xHRE YB_TATA -Noxa-polyA 3656 pLVi G2 (SIN)-GRP78 YB_TATA -Noxa-polyA 3672 pLVi G3 (RSV)-GRP78 YB_TATA -Noxa-polyA 3657 pLVi G2 (SIN)-miR223-Noxa-polyA 3673 pLVi G3 (RSV)-miR223-Noxa-polyA 3658 pLVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -Noxa-polyA 3674 pLVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -Noxa-polyA Tableau 12. Liste des plasmides « inversés » SEQ ID NO : PLASMIDE « INVERSE » + 5’UTR (SIN) SEQ ID NO : PLASMIDE « INVERSE » + 5’UTR (RSV) 3675 pLVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR ATF4-Noxa-polyA 4107 pLVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR ATF4-Noxa-polyA 3676 pLVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR AASS-Noxa-polyA 4108 pLVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR AASS-Noxa-polyA 3677 pLVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR ATF5-Noxa-polyA 4109 pLVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR ATF5-Noxa-polyA 3678 pLVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR AZIN1-Noxa-polyA 4110 pLVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR AZIN1-Noxa-polyA 3679 pLVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR BACE1-Noxa-polyA 4111 pLVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR BACE1-Noxa-polyA 3680 pLVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa-polyA 4112 pLVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa-polyA 3681 pLVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR C/EBPa-Noxa-polyA 4113 pLVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR C/EBPa-Noxa-polyA 3682 pLVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR CHOP-Noxa-polyA 4114 pLVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR CHOP-Noxa-polyA 3683 pLVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR CITED2-Noxa-polyA 4115 pLVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR CITED2-Noxa-polyA 3684 pLVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR CDK16-Noxa-polyA 4116 pLVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR CDK16-Noxa-polyA 3685 pLVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR CPT1C-Noxa-polyA 4117 pLVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR CPT1C-Noxa-polyA 3686 pLVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR DEDD2-Noxa-polyA 4118 pLVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR DEDD2-Noxa-polyA 3687 pLVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR DIAPH1-Noxa-polyA 4119 pLVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR DIAPH1-Noxa-polyA 3688 pLVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR GADD34-Noxa-polyA 4120 pLVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR GADD34-Noxa-polyA 3689 pLVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR HOXB2-Noxa-polyA 4121 pLVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR HOXB2-Noxa-polyA 3690 pLVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR IFDR1-Noxa-polyA 4122 pLVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR IFDR1-Noxa-polyA 3691 pLVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR JUN-Noxa-polyA 4123 pLVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR JUN-Noxa-polyA 3692 pLVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR MIEF1-Noxa-polyA 4124 pLVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR MIEF1-Noxa-polyA 3693 pLVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR NDST1-Noxa-polyA 4125 pLVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR NDST1-Noxa-polyA 3694 pLVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR PCNXL4-Noxa-polyA 4126 pLVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR PCNXL4-Noxa-polyA 3695 pLVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR PPP1R15B-Noxa-polyA 4127 pLVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR PPP1R15B-Noxa-polyA 3696 pLVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR PTP4A1-Noxa-polyA 4128 pLVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR PTP4A1-Noxa-polyA 3697 pLVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR SELK-Noxa-polyA 4129 pLVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR SELK-Noxa-polyA 3698 pLVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR TIE2-Noxa-polyA 4130 pLVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR TIE2-Noxa-polyA 3699 pLVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR TRB3-Noxa-polyA 4131 pLVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR TRB3-Noxa-polyA 3700 pLVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR UCP2-Noxa-polyA 4132 pLVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR UCP2-Noxa-polyA 3701 pLVi G2 (SIN)-SV40-5'UTR VEGFa-Noxa-polyA 4133 pLVi G3 (RSV)-SV40-5'UTR VEGFa-Noxa-polyA 3702 pLVi G2 (SIN)-CMV-5'UTR ATF4-Noxa-polyA 4134 pLVi G3 (RSV)-CMV-5'UTR ATF4-Noxa-polyA 3703 pLVi G2 (SIN)-CMV-5'UTR AASS-Noxa-polyA 4135 pLVi G3 (RSV)-CMV-5'UTR AASS-Noxa-polyA 3704 pLVi G2 (SIN)-CMV-5'UTR ATF5-Noxa-polyA 4136 pLVi G3 (RSV)-CMV-5'UTR ATF5-Noxa-polyA 3705 pLVi G2 (SIN)-CMV-5'UTR 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(SIN)-miR223-5'UTR CDK16-Noxa-polyA 4494 pLVi G3 (RSV)-miR223-5'UTR CDK16-Noxa-polyA 4063 pLVi G2 (SIN)-miR223-5'UTR CPT1C-Noxa-polyA 4495 pLVi G3 (RSV)-miR223-5'UTR CPT1C-Noxa-polyA 4064 pLVi G2 (SIN)-miR223-5'UTR DEDD2-Noxa-polyA 4496 pLVi G3 (RSV)-miR223-5'UTR DEDD2-Noxa-polyA 4065 pLVi G2 (SIN)-miR223-5'UTR DIAPH1-Noxa-polyA 4497 pLVi G3 (RSV)-miR223-5'UTR DIAPH1-Noxa-polyA 4066 pLVi G2 (SIN)-miR223-5'UTR GADD34-Noxa-polyA 4498 pLVi G3 (RSV)-miR223-5'UTR GADD34-Noxa-polyA 4067 pLVi G2 (SIN)-miR223-5'UTR HOXB2-Noxa-polyA 4499 pLVi G3 (RSV)-miR223-5'UTR HOXB2-Noxa-polyA 4068 pLVi G2 (SIN)-miR223-5'UTR IFDR1-Noxa-polyA 4500 pLVi G3 (RSV)-miR223-5'UTR IFDR1-Noxa-polyA 4069 pLVi G2 (SIN)-miR223-5'UTR JUN-Noxa-polyA 4501 pLVi G3 (RSV)-miR223-5'UTR JUN-Noxa-polyA 4070 pLVi G2 (SIN)-miR223-5'UTR MIEF1-Noxa-polyA 4502 pLVi G3 (RSV)-miR223-5'UTR MIEF1-Noxa-polyA 4071 pLVi G2 (SIN)-miR223-5'UTR NDST1-Noxa-polyA 4503 pLVi G3 (RSV)-miR223-5'UTR NDST1-Noxa-polyA 4072 pLVi G2 (SIN)-miR223-5'UTR PCNXL4-Noxa-polyA 4504 pLVi G3 (RSV)-miR223-5'UTR PCNXL4-Noxa-polyA 4073 pLVi G2 (SIN)-miR223-5'UTR PPP1R15B-Noxa-polyA 4505 pLVi G3 (RSV)-miR223-5'UTR PPP1R15B-Noxa-polyA 4074 pLVi G2 (SIN)-miR223-5'UTR PTP4A1-Noxa-polyA 4506 pLVi G3 (RSV)-miR223-5'UTR PTP4A1-Noxa-polyA 4075 pLVi G2 (SIN)-miR223-5'UTR SELK-Noxa-polyA 4507 pLVi G3 (RSV)-miR223-5'UTR SELK-Noxa-polyA 4076 pLVi G2 (SIN)-miR223-5'UTR TIE2-Noxa-polyA 4508 pLVi G3 (RSV)-miR223-5'UTR TIE2-Noxa-polyA 4077 pLVi G2 (SIN)-miR223-5'UTR TRB3-Noxa-polyA 4509 pLVi G3 (RSV)-miR223-5'UTR TRB3-Noxa-polyA 4078 pLVi G2 (SIN)-miR223-5'UTR UCP2-Noxa-polyA 4510 pLVi G3 (RSV)-miR223-5'UTR UCP2-Noxa-polyA 4079 pLVi G2 (SIN)-miR223-5'UTR VEGFa-Noxa-polyA 4511 pLVi G3 (RSV)-miR223-5'UTR VEGFa-Noxa-polyA 4080 pLVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR ATF4-Noxa-polyA 4512 pLVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR ATF4-Noxa-polyA 4081 pLVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR AASS-Noxa-polyA 4513 pLVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR AASS-Noxa-polyA 4082 pLVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR ATF5-Noxa-polyA 4514 pLVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR ATF5-Noxa-polyA 4083 pLVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR AZIN1-Noxa-polyA 4515 pLVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR AZIN1-Noxa-polyA 4084 pLVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR BACE1-Noxa-polyA 4516 pLVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR BACE1-Noxa-polyA 4085 pLVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa-polyA 4517 pLVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR CAT1 (SLC7A1)-Noxa-polyA 4086 pLVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR C/EBPa-Noxa-polyA 4518 pLVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR C/EBPa-Noxa-polyA 4087 pLVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR CHOP-Noxa-polyA 4519 pLVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR CHOP-Noxa-polyA 4088 pLVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR CITED2-Noxa-polyA 4520 pLVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR CITED2-Noxa-polyA 4089 pLVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR CDK16-Noxa-polyA 4521 pLVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR CDK16-Noxa-polyA 4090 pLVi G2 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-5'UTR NDST1-Noxa-polyA 4530 pLVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR NDST1-Noxa-polyA 4099 pLVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR PCNXL4-Noxa-polyA 4531 pLVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR PCNXL4-Noxa-polyA 4100 pLVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR PPP1R15B-Noxa-polyA 4532 pLVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR PPP1R15B-Noxa-polyA 4101 pLVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR PTP4A1-Noxa-polyA 4533 pLVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR PTP4A1-Noxa-polyA 4102 pLVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR SELK-Noxa-polyA 4534 pLVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR SELK-Noxa-polyA 4103 pLVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR TIE2-Noxa-polyA 4535 pLVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR TIE2-Noxa-polyA 4104 pLVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR TRB3-Noxa-polyA 4536 pLVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR TRB3-Noxa-polyA 4105 pLVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR UCP2-Noxa-polyA 4537 pLVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR UCP2-Noxa-polyA 4106 pLVi G2 (SIN)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR VEGFa-Noxa-polyA 4538 pLVi G3 (RSV)-miniCHAC1 YB_TATA -5'UTR VEGFa-Noxa-polyA Tableau 13. Liste des plasmides « inversés » + 5’UTR Afin de faciliter et d’optimiser la production des vecteurs lentiviraux de l’invention, il est également possible d’utiliser une cellule eucaryote innovante laquelle exprime un complexe ribonucléoprotéique construit spécifiquement pour réprimer l’expression du transgène toxique ou suicide du vecteur lentiviral à produire. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a donc pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale exprime au moins un complexe ribonucléoprotéique comprenant : une protéine fusion comprenant la fusion : d’une endonucléase Cas inactive (dCas), et d’un domaine de répression transcriptionnelle KRAB ou d’un domaine de méthylation choisi parmi : DNMT3A, DNMT3B, DNMT3A-L et DNMT3B-L ; ou une protéine fusion comprenant la fusion : d’un domaine de répression transcriptionnelle KRAB, d’une endonucléase Cas inactive (dCas), et d’un domaine de méthylation choisi parmi : DNMT3A, DNMT3B, DNMT3A-L, DNMT3B-L et MeCP2 ; et un ARN guide (ARNg) reconnaissant spécifiquement la séquence promotrice dudit promoteur inductible, ledit au moins un complexe ribonucléoprotéique dCas-KRAB/ARNg, dCas-DNMT3A/ARNg, dCas-DNMT3B/ARNg, dCas-DNMT3A-L/ARNg, dCas-DNMT3B-L/ARNg, KRAB-dCas-DNMT3A/ARNg, KRAB-dCas-DNMT3B/ARNg, KRAB-dCas-DNMT3A-L/ARNg, KRAB-dCas-DNMT3B-L/ARNg ou dCas-KRAB-MeCP2/ARNg étant en particulier exprimé stablement. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ledit domaine de répression transcriptionnelle KRAB ou ledit domaine de méthylation choisi parmi : DNMT3A, DNMT3B, DNMT3A-L et DNMT3B-L est en position N-terminale ou C-Terminale de ladite endonucléase Cas inactive (dCas). Avantageusement, l’invention a pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ledit domaine de répression transcriptionnelle KRAB ou ledit domaine de méthylation choisi parmi : DNMT3A, DNMT3B, DNMT3A-L et DNMT3B-L est en position C-Terminale de ladite endonucléase Cas inactive (dCas). L’expression « cellule eucaryote animale exprimant au moins un complexe ribonucléoprotéique » fait référence au fait que la cellule eucaryote animale peut exprimer un seul complexe ribonucléoprotéique ( celui d’interférence dCas -KRAB/ ARNg ; ou un de ceux de méthylation dCas-DNMT3A/ ARNg , dCas-DNMT3B/ ARNg , dCas-DNMT3A-L/ ARNg ou dCas-DNMT3B-L/ ARNg ; ou un de ceux bifonctionnels KRAB-dCas-DNMT3A/ ARNg , KRAB-dCas-DNMT3B/ ARNg , KRAB-dCas-DNMT3A-L/ ARNg , KRAB-dCas-DNMT3B-L/ ARNg ou dCas-KRAB-MeCP2/ ARNg ) comme elle peut en exprimer plusieurs et notamment au moins deux à savoir : un complexe ribonucléoprotéique d’interférence (dit CRISPRi) dCas-KRAB/ARNg ; et un complexe ribonucléoprotéique de méthylation (dit CRISPRm) choisi parmi : dCas-DNMT3A/ARNg, dCas-DNMT3B/ARNg, dCas-DNMT3A-L/ARNg et dCas-DNMT3B-L/ARNg. Les stratégies d’interférence CRISPR (CRISPRi) et de méthylation ciblée par CRISPR (CRISPRm) selon l’invention sont basées sur la fusion d’une endonucléase CRISPR-Cas inactive ou « dead » (dCas) et d’un domaine de répression transcriptionnelle KRAB ( Krüppel -Associated Box ) ou de méthylation DNMT3A, DNMT3B, DNMT3A-L ou DNMT3B-L ( DNA methyltransferase ). La dCas, grâce à son ARN guide (ARNg), permet de cibler une séquence spécifique. Ce ciblage permet au domaine KRAB d’y bloquer stériquement la transcription et aux domaines DNMT3A, DNMT3B, DNMT3A-L ou DNMT3B-L de bloquer la transcription par méthylation de novo de l’ADN ciblé. La mise en place d’une stratégie de CRISPRi et/ou CRISPRm sur une séquence interne au vecteur lentiviral lors de la production de particules recombinantes, nécessite la co-expression d’au moins un complexe CRISPRi et/ou CRISPRm et d’un ARNg dans les cellules eucaryotes animales transfectées. Alternativement, l’invention met en œuvre un complexe bifonctionnel CRISPRi/m comprenant la fusion d’une endonucléase CRISPR-Cas inactive ou « dead » (dCas), d’un domaine de répression transcriptionnelle KRAB et d’un domaine de méthylation DNMT3A, DNMT3B, DNMT3A-L, DNMT3B-L ou MeCP2, et d’un ARNg dans les cellules eucaryotes animales transfectées. Le terme « ARNg (ARN guide) » désigne un ARN s’associant à une enzyme ou à un complexe protéique, qui, lorsqu’il s’apparie à une séquence d’ARN ou d’ADN complémentaire, permet à l’enzyme ou au complexe protéique de se positionner sur cet ARN ou ADN complémentaire. L’expression « complexe ribonucléoprotéique dCas-KRAB/ARNg » fait référence à un système d’interférence comprenant l’association d’une protéine fusion dCas-KRAB et d’un ARN guide (ARNg) reconnaissant spécifiquement une succession de 17 à 24 bases suivies d’un motif « PAM » ( Protospacer Adjacent Motif ) unique ou répété dans la séquence promotrice d’un promoteur présent dans le génome du vecteur lentiviral à produire. Ces deux éléments peuvent fonctionner de concert, en synergie avec l’inversion de ladite cassette d’expression, et permettent de manière inattendue de produire des titres de vecteur lentiviral transportant un transgène d’intérêt (notamment un transgène toxique ou suicide) jusqu’alors jamais atteint. En ce sens, ce mode de réalisation est une vraie révolution puisqu’elle permet enfin d’offrir aux patients les thérapies cellulaires sûres et efficaces dont ils ont besoin. L’expression « complexe ribonucléoprotéique dCas-DNMT3A/ARNg, dCas-DNMT3B/ARNg, dCas-DNMT3A-L/ARNg ou dCas-DNMT3B-L/ARNg » fait référence à un système de méthylation comprenant l’association d’une protéine fusion dCas-DNMT3A, dCas-DNMT3B, dCas-DNMT3A-L ou dCas-DNMT3B-L et d’un ARN guide (ARNg) reconnaissant spécifiquement une succession de 17 à 24 bases suivies d’un motif « PAM » ( Protospacer Adjacent Motif ) unique ou répété dans la séquence promotrice d’un promoteur présent dans le génome du vecteur lentiviral à produire. Ces deux éléments peuvent fonctionner de concert, en synergie avec l’inversion de ladite cassette d’expression, et permettent de manière inattendue de produire des titres de vecteur lentiviral transportant un transgène d’intérêt (notamment un transgène toxique ou suicide) jusqu’alors jamais atteint. En ce sens, ce mode de réalisation est une vraie révolution puisqu’elle permet enfin d’offrir aux patients les thérapies cellulaires sûres et efficaces dont ils ont besoin. L’expression « complexe ribonucléoprotéique KRAB-dCas-DNMT3A/ARNg, KRAB-dCas-DNMT3B/ARNg, KRAB-dCas-DNMT3A-L/ARNg, KRAB-dCas-DNMT3B-L/ARNg ou dCas-KRAB-MeCP2/ARNg » fait référence à un système bifonctionnel d’interférence et de méthylation comprenant l’association d’une protéine fusion KRAB-dCas-DNMT3A, KRAB-dCas-DNMT3B, KRAB-dCas-DNMT3A-L, KRAB-dCas-DNMT3B-L ou dCas-KRAB-MeCP2 et d’un ARN guide (ARNg) reconnaissant spécifiquement une succession de 17 à 24 bases suivies d’un motif « PAM » ( Protospacer Adjacent Motif ) unique ou répété dans la séquence promotrice d’un promoteur présent dans le génome du vecteur lentiviral à produire. Ces trois éléments peuvent fonctionner de concert, en synergie avec l’inversion de ladite cassette d’expression, et permettent de manière inattendue de produire des titres de vecteur lentiviral transportant un transgène d’intérêt (notamment un transgène toxique ou suicide) jusqu’alors jamais atteint. En ce sens, ce mode de réalisation est une vraie révolution puisqu’elle permet enfin d’offrir aux patients les thérapies cellulaires sûres et efficaces dont ils ont besoin. L’expression « protéine fusion dCas-KRAB » fait référence à la combinaison de deux séquences d’acides aminés provenant de protéines différentes ou de leurs fragments pour créer une protéine artificielle et fonctionnelle. Dans l’invention, ces deux composants fusionnés sont, comme mentionné, une endonucléase Cas inactive (dCas) et un domaine de répression transcriptionnelle KRAB, et un peptide signal d’import nucléaire (NLS) est ajouté pour assurer sa localisation nucléaire ( e.g. codé par un acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 543). L’expression « protéine fusion dCas-DNMT3A, dCas-DNMT3B, dCas-DNMT3A-L ou dCas-DNMT3B-L » fait référence à la combinaison de deux séquences d’acides aminés provenant de protéines différentes ou de leurs fragments pour créer une protéine artificielle et fonctionnelle. Dans l’invention, ces deux composants fusionnés sont, comme mentionné, une endonucléase Cas inactive (dCas) et un domaine de méthylation DNMT3A, DNMT3B, DNMT3A-L ou DNMT3B-L. Un peptide signal d’import nucléaire (NLS) est également ajouté pour assurer sa localisation nucléaire ( e.g. codé par un acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 543). L’expression « protéine fusion KRAB-dCas-DNMT3A, KRAB-dCas-DNMT3B, KRAB-dCas-DNMT3A-L, KRAB-dCas-DNMT3B-L ou dCas-KRAB-MeCP2 » fait référence à la combinaison de trois séquences d’acides aminés provenant de protéines différentes ou de leurs fragments pour créer une protéine artificielle et fonctionnelle. Dans l’invention, ces trois composants fusionnés sont, comme mentionné, un domaine de répression transcriptionnelle KRAB, une endonucléase Cas inactive (dCas) et un domaine de méthylation DNMT3A, DNMT3B, DNMT3A-L ou DNMT3B-L. Un peptide signal d’import nucléaire (NLS) est également ajouté pour assurer sa localisation nucléaire ( e.g. codé par un acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 543). L’expression « endonucléase Cas inactive (dCas) » ou l’expression équivalente endonucléase Cas « dead » (dCas) fait référence à des endonucléases dont l’activité de clivage d’un ou deux brins d’ADN ne fonctionne pas. À ce jour, plusieurs endonucléases Cas (Cas9, Cas12a, Cas12b, CasX ou Cas12e, Cas12f ou Cas14, Cas12j ou CasΦ) provenant de différents hôtes ont été identifiées et caractérisées, voire modifiées ( p. ex. amélioration de leur fonction), lesquelles peuvent être mises en œuvre par l’invention après leur inactivation. Selon un autre mode de réalisation, celle-ci a donc pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite endonucléase Cas inactive (dCas) est choisie parmi : les endonucléases Cas9 inactives de S. pyogènes , S. aureus , C. diphtheriae , N. meningitidis , S. canis , S. macacae , F. tularensis , Acidaminococcus , C. jejuni , S. pneumoniae et S. thermophilus ; les endonucléases Cas12a inactives de Lachnospiraceae bacterium et Acidaminococcus sp ; les endonucléases Cas12b inactives de Alicyclobacillus kakegawensis et de Bacillus hisashii ; les endonucléases CasX ou Cas12e inactives de Deltaproteobacteria et de Planctomycetes ; les endonucléases CRISPR de type V inactives de Syntrophomonas palmitatica et d’ Acidibacillus sulfuroxidans ; les endonucléases Cas 12j ou CasΦ inactives du clade de Biggiephage ; les orthologues inactifs Cas9, Cas12a, Cas12b, CasX ou Cas12e, CRISPR de type V, Cas 12j ou CasΦ dérivés de ces organismes ; et les mutants ou les variants inactifs Cas9, Cas12a, Cas12b, CasX ou Cas12e, CRISPR de type V, Cas 12j ou CasΦ dérivés de ces organismes. L’expression « orthologues » fait référence à des endonucléases Cas similaires présentes chez deux ou plusieurs espèces différentes. Celles-ci, du fait de l’évolution peuvent être inactives et si ce n’est pas le cas, il est possible de les rendre non fonctionnelles par mutation pour les exploiter aux fins de l’invention. L’expression « mutants » fait référence à une endonucléase Cas dans laquelle ont été introduites une ou plusieurs mutations parmi lesquelles on retrouve la délétion, la substitution et/ou l’ajout d’un ou plusieurs acides aminés. Par « mutants inactifs », il est donc fait référence à des protéines Cas modifiées par la main de l’homme ( e.g. par génie génétique) afin d’en inactiver l’activité de clivage de l’ADN. L’expression « variants inactifs » fait référence à des endonucléases Cas modifiées naturellement par le biais de l’évolution, lesquelles ne présentent pas d’activité de clivage de l’ADN. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite endonucléase Cas inactive est une endonucléase Cas9 inactive (dCas9). Il est alors question d’un complexe ribonucléoprotéique dCas9-KRAB/ARNg, dCas9-DNMT3A/ARNg, dCas9-DNMT3B/ARNg, dCas9-DNMT3A-L/ARNg, dCas9-DNMT3B-L/ARNg, KRAB-dCas9-DNMT3A/ARNg, KRAB-dCas9-DNMT3B/ARNg, KRAB-dCas9-DNMT3A-L/ARNg, KRAB-dCas9-DNMT3B-L/ARNg ou dCas9-KRAB-MeCP2/ARNg. En particulier, l’invention a pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite endonucléase Cas inactive est une endonucléase Cas9 inactive (dCas9) dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 546 ou dont l’acide nucléique code une endonucléase Cas9 inactive (dCas9) dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 4 547. En particulier, l’invention a également pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite endonucléase Cas inactive est une endonucléase Cas9 inactive (dCas9) dont l’acide nucléique correspond à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 546 ou dont l’acide nucléique code une endonucléase Cas9 inactive (dCas9) dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 4 547. L’expression « domaine de répression transcriptionnelle KRAB » fait référence au domaine KRAB ( Kruppel-associated suppression box ) de la protéine à doigts de zinc humaine Kox1 (ou zinc finger protein 10 ) ou Zim3, lequel provoque une inhibition spécifique des ARN polymérases II et III. Ce faisant, ce domaine KRAB inhibe l’expression du ou des gènes présents sur l’ADN où il est recruté. En particulier, l’invention a pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ledit domaine de répression transcriptionnelle KRAB est codé par un acide nucléique ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 544 ou 4 552, ou dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 4 545 ou 4 553. En particulier, l’invention a également pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ledit domaine de répression transcriptionnelle KRAB est codé par l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 544 ou 4 552, ou dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 4 545 ou 4 553. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite protéine fusion dCas-KRAB est une protéine fusion dCas9-KRAB. En particulier, l’invention a pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite protéine fusion dCas-KRAB est une protéine fusion dCas9-KRAB dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 548 ou 4 554, ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-KRAB dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 4 549 ou 4 555. En particulier, l’invention a également pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite protéine fusion dCas-KRAB est une protéine fusion dCas9-KRAB dont l’acide nucléique correspond à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 548 ou 4 554, ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-KRAB dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 4 549 ( codé par le plasmide pLV-EF1a-dCas9-KRAB-P2A-BlastR de séquence SEQ ID NO : 4 551 ) ou 4 555. L’expression « domaine de méthylation choisi parmi : DNMT3A, DNMT3B, DNMT3A-L, DNMT3B-L et MeCP2 » fait référence au domaine fonctionnel d’ADN méthyltransférase, lequel catalyse la modification covalente de l’ADN par transfert de S-adenosyl-1-methionine (SAM) en convertissant la cytosine en 5-methylcytosine. Ce faisant, ce domaine DNMT3A, DNMT3B, DNMT3A-L, DNMT3B-L ou MeCP2 inhibe l’expression du ou des gènes présents sur l’ADN où il est recruté. En particulier, l’invention a pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ledit domaine de méthylation : DNMT3A est codé par un acide nucléique ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 556 ou dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 4 557 ; DNMT3B est codé par un acide nucléique ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 568 ou dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 4 569 ; DNMT3A-L est codé par un acide nucléique ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 560 ou dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 4 561 ; ou DNMT3B-L est codé par un acide nucléique ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 570 ou dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 4 571. En particulier, l’invention a également pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ledit domaine de méthylation : DNMT3A est codé par l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 556 ou dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 4 557 ; DNMT3B est codé par l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 568 ou dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 4 569 ; DNMT3A-L est codé par l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 560 ou dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 4 561 ; ou DNMT3B-L est codé par l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 570 ou dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 4 571. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ledit domaine de méthylation MeCP2 est codé par un acide nucléique ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 572 ou dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 4 573. En particulier, l’invention a pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ledit domaine de méthylation MeCP2 est codé par l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 572 ou dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 4 573. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite protéine fusion dCas-DNMT3A, dCas-DNMT3B, dCas-DNMT3A-L ou dCasDNMT3B-L est respectivement une protéine fusion dCas9-DNMT3A, dCas9-DNMT3B, dCas9-DNMT3A-L ou dCas9-DNMT3B-L. En particulier, l’invention a pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle : ladite protéine fusion dCas-DNMT3A est une protéine fusion dCas9-DNMT3A dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 562 ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-DNMT3A dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 4 563 ; ladite protéine fusion dCas-DNMT3B est une protéine fusion dCas9-DNMT3B dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 574 ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-DNMT3B dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 4 575 ; ladite protéine fusion dCas-DNMT3A-L est une protéine fusion dCas9-DNMT3A-L dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 566 ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-DNMT3A-L dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 4 567 ; ou ladite protéine fusion dCas-DNMT3B-L est une protéine fusion dCas9-DNMT3B-L dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 576 ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-DNMT3B-L dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 4 577. En particulier, l’invention a également pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite protéine fusion dCas-DNMT3A est une protéine fusion dCas9-DNMT3A dont l’acide nucléique correspond à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 562 ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-DNMT3A dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 4 563 ; ladite protéine fusion dCas-DNMT3B est une protéine fusion dCas9-DNMT3B dont l’acide nucléique correspond à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 574 ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-DNMT3B dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 4 575 ; ladite protéine fusion dCas-DNMT3A-L est une protéine fusion dCas9-DNMT3A-L dont l’acide nucléique correspond à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 566 ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-DNMT3A-L dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 4 567 ; ou ladite protéine fusion dCas-DNMT3B-L est une protéine fusion dCas9-DNMT3B-L dont l’acide nucléique correspond à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 576 ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-DNMT3B-L dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 4 577. De manière intéressante, si l’enzyme DNMT3L est catalytiquement inactive, celle-ci stimule l’activité des DNMT3A et DNMT3B et favorise ainsi l’extinction d’un promoteur par méthylation. D’où les domaines de méthylation DNMT3A-L et DNMT3B-L où respectivement DNMT3A ou DNMT3B ont été combinés à DNMT3L. Ceci étant, il est possible d’envisager l’ajout d’un complexe ribonucléoprotéique dCas-DNMT3L/ARNg dans la cellule eucaryote animale de l’invention. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale exprime en outre un autre complexe ribonucléoprotéique comprenant : une protéine fusion comprenant la fusion : d’une endonucléase Cas inactive (dCas) ; et d’un domaine favorisant la méthylation DNMT3L ( fusion dCas-DNMT3L ) ; et un ARN guide (ARNg) reconnaissant spécifiquement la séquence promotrice dudit promoteur inductible, ledit autre complexe ribonucléoprotéique dCas-DNMT3L/ARNg étant en particulier exprimé stablement. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ledit domaine favorisant la méthylation DNMT3L est en position N-Terminale ou C-Terminale de ladite endonucléase Cas inactive (dCas). Avantageusement, l’invention a pour objet l’utilisation d’une cellule eucaryote animale telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ledit domaine favorisant la méthylation DNMT3L est en position C-Terminale de ladite endonucléase Cas inactive (dCas). Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ledit domaine favorisant la méthylation DNMT3L est codé par un acide nucléique ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 558 ou dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 4 559. En particulier, l’invention a pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ledit domaine favorisant la méthylation DNMT3L est codé par l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 558 ou dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 4 559. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite protéine fusion dCas-DNMT3L est une protéine fusion dCas9-DNMT3L dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 564 ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-DNMT3L dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 4 565. En particulier, l’invention a pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite protéine fusion dCas-DNMT3L est une protéine fusion dCas9-DNMT3L dont l’acide nucléique correspond à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 564 ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-DNMT3L dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 4 565. Comme mentionné ci-dessus, l’invention met également en œuvre un complexe bifonctionnel CRISPRi/m comprenant : la fusion d’une endonucléase CRISPR-Cas inactive ou « dead » (dCas), d’un domaine de répression transcriptionnelle KRAB et d’un domaine de méthylation DNMT3A, DNMT3B, DNMT3A-L, DNMT3B-L ou MeCP2 ; et un ARN guide (ARNg) reconnaissant spécifiquement la séquence promotrice dudit promoteur inductible ( celui de la cassette d’expression de l’invention ). En particulier ce complexe bifonctionnel (avantageusement exprimé de manière stable) est choisi parmi : KRAB-dCas-DNMT3A-L/ARNg, KRAB-dCas-DNMT3B-L/ARNg et dCas-KRAB-MeCP2/ARNg, et est avantageusement choisi parmi : KRAB-dCas9-DNMT3A-L/ARNg, KRAB-dCas9-DNMT3B-L/ARNg et dCas9-KRAB-MeCP2/ARNg. Aussi, l’invention a pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle : ladite protéine fusion KRAB-dCas-DNMT3A-L est une protéine fusion KRAB-dCas9-DNMT3A-L dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 578 ou 4 584, ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion KRAB-dCas9-DNMT3A-L dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 4 579 ou 4 585 ; ladite protéine fusion KRAB-dCas-DNMT3B-L est une protéine fusion KRAB-dCas9-DNMT3B-L dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 580 ou 4 586, ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion KRAB-dCas9-DNMT3B-L dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 4 581 ou 4 587 ; ou ladite protéine fusion dCas-KRAB-MeCP2/ARNg est une protéine fusion dCas9-KRAB-MeCP2/ARNg dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 582 ou 4 588, ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-KRAB-MeCP2/ARNg dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 4 583 ou 4 589. En particulier, l’invention a pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle : ladite protéine fusion KRAB-dCas-DNMT3A-L est une protéine fusion KRAB-dCas9-DNMT3A-L dont l’acide nucléique correspond à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 578 ou 4 584, ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion KRAB-dCas9-DNMT3A-L dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 4 579 ( codé par le plasmide pLV-EF1a-KRAB1-dCas9-DNMT3a-l-P2A-BlastR de séquence SEQ ID NO : 4 590 ) ou 4 585 ; ladite protéine fusion KRAB-dCas-DNMT3B-L est une protéine fusion KRAB-dCas9-DNMT3B-L dont l’acide nucléique correspond à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 580 ou 4 586, ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion KRAB-dCas9-DNMT3B-L dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 4 581 ou 4 587 ; ou ladite protéine fusion dCas-KRAB-MeCP2/ARNg est une protéine fusion dCas9-KRAB-MeCP2/ARNg dont l’acide nucléique correspond à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 582 ou 4 588, ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-KRAB-MeCP2/ARNg dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 4 583 ou 4 589. Avantageusement, l’invention a pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ledit complexe ribonucléoprotéique dCas-KRAB/ARNg, dCas-DNMT3A/ARNg, dCas-DNMT3B/ARNg, dCas-DNMT3L/ARNg, dCas-DNMT3A-L/ARNg, dCas-DNMT3B-L/ARNg, KRAB-dCas-DNMT3A/ARNg, KRAB-dCas-DNMT3B/ARNg, KRAB-dCas-DNMT3A-L/ARNg, KRAB-dCas-DNMT3B-L/ARNg ou dCas-KRAB-MeCP2/ARNg est exprimé stablement via une intégration ciblée dans le génome de ladite cellule eucaryote animale. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ledit ARNg comprend ou consiste en un acide nucléique ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 541 (lequel reconnaît spécifiquement le promoteur constitutif SV40 (SEQ ID NO : 3)). En particulier, l’invention a pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ledit ARNg comprend ou consiste en un acide nucléique correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 541. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a donc pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle : ladite protéine fusion : dCas-KRAB est une protéine fusion dCas9-KRAB dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 548 ou 4 554, ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-KRAB dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 4 549 ou 4 555, dCas-DNMT3A est une protéine fusion dCas9-DNMT3A dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 562 ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-DNMT3A dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 4 563, dCas-DNMT3B est une protéine fusion dCas9-DNMT3B dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 574 ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-DNMT3B dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 4 575, dCas-DNMT3A-L est une protéine fusion dCas9-DNMT3A-L dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 566 ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-DNMT3A-L dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 4 567, dCas-DNMT3B-L est une protéine fusion dCas9-DNMT3B-L dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 576 ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-DNMT3B-L dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 4 577, dCas-DNMT3L est une protéine fusion dCas9-DNMT3L dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 564 ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-DNMT3L dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 4 565, KRAB-dCas-DNMT3A-L est une protéine fusion KRAB-dCas9-DNMT3A-L dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 578 ou 4 584, ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion KRAB-dCas9-DNMT3A-L dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 4 579 ou 4 585, KRAB-dCas-DNMT3B-L est une protéine fusion KRAB-dCas9-DNMT3B-L dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 580 ou 4 586, ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion KRAB-dCas9-DNMT3B-L dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 4 581 ou 4 587, et/ou dCas-KRAB-MeCP2/ARNg est une protéine fusion dCas9-KRAB-MeCP2/ARNg dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 582 ou 4 588, ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-KRAB-MeCP2/ARNg dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 4 583 ou 4 589 ; ledit ARNg comprend ou consiste en un acide nucléique ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 541 ; et ledit promoteur constitutif est le SV40 dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 3. En particulier, l’invention a pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle : ladite protéine fusion : dCas-KRAB est une protéine fusion dCas9-KRAB dont l’acide nucléique correspond à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 548 ou 4 554, ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-KRAB dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 4 549 ( codé par le plasmide pLV-EF1a-dCas9-KRAB-P2A-BlastR de séquence SEQ ID NO : 4 551 ) ou 4 555, dCas-DNMT3A est une protéine fusion dCas9-DNMT3A dont l’acide nucléique correspond à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 562 ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-DNMT3A dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 4 563, dCas-DNMT3B est une protéine fusion dCas9-DNMT3B dont l’acide nucléique correspond à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 574 ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-DNMT3B dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 4 575, dCas-DNMT3A-L est une protéine fusion dCas9-DNMT3A-L dont l’acide nucléique correspond à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 566 ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-DNMT3A-L dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 4 567, dCas-DNMT3B-L est une protéine fusion dCas9-DNMT3B-L dont l’acide nucléique correspond à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 576 ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-DNMT3B-L dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 4 577, dCas-DNMT3L est une protéine fusion dCas9-DNMT3L dont l’acide nucléique correspond à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 564 ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-DNMT3L dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 4 565, KRAB-dCas-DNMT3A-L est une protéine fusion KRAB-dCas9-DNMT3A-L dont l’acide nucléique correspond à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 578 ou 4 584, ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion KRAB-dCas9-DNMT3A-L dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 4 579 ( codé par le plasmide pLV-EF1a-KRAB1-dCas9-DNMT3a-l-P2A-BlastR de séquence SEQ ID NO : 4 590 ) ou 4 585, KRAB-dCas-DNMT3B-L est une protéine fusion KRAB-dCas9-DNMT3B-L dont l’acide nucléique correspond à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 580 ou 4 586, ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion KRAB-dCas9-DNMT3B-L dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 4 581 ou 4 587, et/ou dCas-KRAB-MeCP2/ARNg est une protéine fusion dCas9-KRAB-MeCP2/ARNg dont l’acide nucléique correspond à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 582 ou 4 588, ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-KRAB-MeCP2/ARNg dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 4 583 ou 4 589 ; ledit ARNg comprend ou consiste en un acide nucléique correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 541 ; et ledit promoteur constitutif est le SV40 dont l’acide nucléique correspond à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 3. Selon ce mode de réalisation, il est donc possible de produire un vecteur lentiviral comportant une cassette d’expression choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 19, 100 à 126, 1 397 et 1 412 à 1 439, et/ou dont le génome vecteur peut être choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 41, 57, 532 à 558, 964 à 990, 1 845, 1 861, 1 877 à 1 903 et 2 309 à 2 335, lequel peut être codé par un plasmide choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 2 747, 2 763, 2 779 à 2 805, 3 211 à 3 237, 3 643, 3 659, 3 675 à 3 701 et 4 107 à 4 133. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ledit ARNg comprend ou consiste en un acide nucléique ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 540 (lequel reconnaît spécifiquement le promoteur inductible 2xAARE YB_TATA (SEQ ID NO : 12)). En particulier, l’invention a pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ledit ARNg comprend ou consiste en un acide nucléique correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 540. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a donc pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle : ladite protéine fusion : dCas-KRAB est une protéine fusion dCas9-KRAB dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 548 ou 4 554, ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-KRAB dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 4 549 ou 4 555, dCas-DNMT3A est une protéine fusion dCas9-DNMT3A dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 562 ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-DNMT3A dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 4 563, dCas-DNMT3B est une protéine fusion dCas9-DNMT3B dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 574 ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-DNMT3B dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 4 575, dCas-DNMT3A-L est une protéine fusion dCas9-DNMT3A-L dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 566 ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-DNMT3A-L dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 4 567, dCas-DNMT3B-L est une protéine fusion dCas9-DNMT3B-L dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 576 ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-DNMT3B-L dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 4 577, dCas-DNMT3L est une protéine fusion dCas9-DNMT3L dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 564 ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-DNMT3L dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 4 565, KRAB-dCas-DNMT3A-L est une protéine fusion KRAB-dCas9-DNMT3A-L dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 578 ou 4 584, ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion KRAB-dCas9-DNMT3A-L dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 4 579 ou 4 585, KRAB-dCas-DNMT3B-L est une protéine fusion KRAB-dCas9-DNMT3B-L dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 580 ou 4 586, ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion KRAB-dCas9-DNMT3B-L dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 4 581 ou 4 587, et/ou dCas-KRAB-MeCP2/ARNg est une protéine fusion dCas9-KRAB-MeCP2/ARNg dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 582 ou 4 588, ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-KRAB-MeCP2/ARNg dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 4 583 ou 4 589 ; ledit ARNg comprend ou consiste en un acide nucléique ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 540 ; et ledit promoteur inductible est le 2xAARE YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 12. En particulier, l’invention a pour objet la méthode de production de vecteurs lentiviraux telle que décrite ci-dessus, dans laquelle : ladite protéine fusion : dCas-KRAB est une protéine fusion dCas9-KRAB dont l’acide nucléique correspond à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 548 ou 4 554, ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-KRAB dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 4 549 ( codé par le plasmide pLV-EF1a-dCas9-KRAB-P2A-BlastR de séquence SEQ ID NO : 4 551 ) ou 4 555, dCas-DNMT3A est une protéine fusion dCas9-DNMT3A dont l’acide nucléique correspond à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 562 ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-DNMT3A dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 4 563, dCas-DNMT3B est une protéine fusion dCas9-DNMT3B dont l’acide nucléique correspond à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 574 ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-DNMT3B dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 4 575, dCas-DNMT3A-L est une protéine fusion dCas9-DNMT3A-L dont l’acide nucléique correspond à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 566 ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-DNMT3A-L dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 4 567, dCas-DNMT3B-L est une protéine fusion dCas9-DNMT3B-L dont l’acide nucléique correspond à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 576 ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-DNMT3B-L dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 4 577, dCas-DNMT3L est une protéine fusion dCas9-DNMT3L dont l’acide nucléique correspond à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 564 ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-DNMT3L dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 4 565, KRAB-dCas-DNMT3A-L est une protéine fusion KRAB-dCas9-DNMT3A-L dont l’acide nucléique correspond à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 578 ou 4 584, ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion KRAB-dCas9-DNMT3A-L dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 4 579 ( codé par le plasmide pLV-EF1a-KRAB1-dCas9-DNMT3a-l-P2A-BlastR de séquence SEQ ID NO : 4 590 ) ou 4 585, KRAB-dCas-DNMT3B-L est une protéine fusion KRAB-dCas9-DNMT3B-L dont l’acide nucléique correspond à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 580 ou 4 586, ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion KRAB-dCas9-DNMT3B-L dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 4 581 ou 4 587, et/ou dCas-KRAB-MeCP2/ARNg est une protéine fusion dCas9-KRAB-MeCP2/ARNg dont l’acide nucléique correspond à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 582 ou 4 588, ou dont l’acide nucléique code une protéine fusion dCas9-KRAB-MeCP2/ARNg dont la séquence d’acides aminés correspond à la séquence SEQ ID NO : 4 583 ou 4 589 ; ledit ARNg comprend ou consiste en un acide nucléique correspondant à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 540 ; et ledit promoteur inductible est le 2xAARE YB_TATA dont l’acide nucléique correspond à l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 12. Selon ce mode de réalisation, il est donc possible de produire un vecteur lentiviral comportant une cassette d’expression choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 28, 343 à 369, 1 406 et 1 656 à 1 682, et/ou dont le génome vecteur peut être choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 50, 66, 775 à 801, 1 207 à 1 233, 1 854, 1 870, 2 120 à 2 146 et 2 552 à 2 578, lequel peut être codé par un plasmide choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 2 756, 2 772, 3 022 à 3 048, 3 454 à 3 480, 3 652, 3 668, 3 918 à 3 944 et 4 350 à 4 376. Puisque est décrit une méthode de production d’un vecteur lentiviral, il est entendu qu’un autre aspect de l’invention concerne un vecteur lentiviral comprenant un génome vecteur tel que décrit ci-dessus. Selon ce même aspect, l’invention a également pour objet un vecteur lentiviral susceptible d’être obtenu par la méthode de production de vecteurs viraux lentiviraux telle que décrite ci-dessus. Il est également entendu qu’un autre aspect de l’invention concerne l’utilisation d’un vecteur lentiviral tel que décrit ci-dessus pour transduire une cellule eucaryote animale, en particulier ladite cellule eucaryote animale étant choisie parmi : une cellule cancéreuse, notamment une cellule cancéreuse formant une tumeur solide ou étant impliquée dans un cancer du sang ; une cellule immunitaire notamment choisie parmi : le lymphocyte T et la cellule NK ; un myofibroblaste, notamment un myofibroblaste impliqué dans un processus de fibrose ; un astrocyte, notamment un astrocyte activé lors d’un traumatisme cérébral ou de la moelle épinière et formant une cicatrice gliale empêchant la régénération ; et une cellule souche induite (iPS). L’expression « une cellule cancéreuse » désigne une cellule anormale ayant acquis des caractères spécifiques à l’origine d'un cancer (ou tumeur maligne), lequel est une maladie caractérisée par une prolifération cellulaire (tumeur) non contrôlée et anormalement importante au sein d’un tissu normal (sain) de l'organisme, de telle manière que la survie de ce dernier est menacée. Parmi ces tumeurs, il existe les tumeurs solides et les tumeurs liquides. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a donc pour objet l’utilisation d’un vecteur lentiviral telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est une cellule cancéreuse, notamment une cellule cancéreuse formant une tumeur solide ou étant impliquée dans un cancer du sang. En particulier, l’invention a également pour objet l’utilisation d’un vecteur lentiviral telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est une cellule cancéreuse formant une tumeur solide. En particulier, l’invention a également pour objet l’utilisation d’un vecteur lentiviral telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est une cellule cancéreuse étant impliquée dans un cancer du sang. L’expression « une cellule immunitaire » désigne une cellule impliquée dans le fonctionnement du système immunitaire. De nombreux exemples existent comme les lymphocytes ( e.g. T, B, NK et NKT), les phagocytes ( e.g. macrophage et cellule dendritique) et les granulocytes ( e.g. neutrophile, éosinophile et basophile) et les cellules précurseurs de ces cellules. Ces cellules peuvent être d’origine autologue, syngénique, allogénique ou xénogénique. Enfin ces cellules peuvent être génétiquement modifiées. A noter que dans l’invention sont particulièrement mis en œuvre un lymphocyte T et une cellule NK. Par « lymphocyte T », l’invention fait notamment référence à un lymphocyte T naïf, effecteur ou mémoire, avec des propriétés auxiliaires, cytotoxiques ou régulatrices. Par « cellule NK », l’invention fait notamment référence à une cellule NK primaires, cancéreuses ou immortalisées. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a donc pour objet l’utilisation d’un vecteur lentiviral telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est une cellule immunitaire notamment choisie parmi : le lymphocyte T et la cellule NK. En particulier, l’invention a également pour objet l’utilisation d’un vecteur lentiviral telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est un lymphocyte T ou une cellule NK. Le terme « myofibroblaste » désigne une cellule caractérisée par des propriétés de production de protéines matricielles, de prolifération, de migration et de contraction, activées dans des processus de réparation et cicatrisation. Ces myofibroblastes sont retrouvés dans certains organes comme le foie, le poumon, le cœur ou le rein lors de maladies chroniques. Le processus de remplacement du tissu par des myofibroblastes est appelé fibrose. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a donc pour objet l’utilisation d’un vecteur lentiviral telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est un myofibroblaste. En particulier, l’invention a également pour objet l’utilisation d’un vecteur lentiviral telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est un myofibroblaste impliqué dans un processus de fibrose. Le terme « un astrocyte » désigne une cellule gliale du système nerveux central. Généralement de forme étoilée, il assure une diversité de fonctions importantes, centrée sur le support et la protection des neurones. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a donc pour objet l’utilisation d’un vecteur lentiviral telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est un astrocyte, notamment un astrocyte activé lors d’un traumatisme cérébral ou de la moelle épinière et formant une cicatrice gliale empêchant la régénération. En particulier, l’invention a également pour objet l’utilisation d’un vecteur lentiviral telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est un astrocyte activé lors d’un traumatisme cérébral ou de la moelle épinière formant une cicatrice gliale empêchant la régénération. L’expression « une cellule souche » désigne une cellule caractérisée par son indifférenciation et sa capacité à se différencier et à générer ou régénérer un tissu, comme le tissu hématopoïétique, le muscle, le cerveau (neurones), la rétine, le foie (hépatocytes), des cellules beta du pancréas, le rein, du cartilage, de l’os ou de la peau. Ces cellules, prélevées sur un organisme adulte, ou induites à partir de cellules différenciées (iPS), peuvent être d’origine autologue, syngénique, allogénique ou xénogénique. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a donc pour objet l’utilisation d’un vecteur lentiviral telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est une cellule souche induite (iPS). Selon un autre aspect de l’invention, celle-ci a pour objet une cellule eucaryote animale transduite par un vecteur lentiviral tel que décrit ci-dessus, ladite cellule eucaryote animale transduite étant en particulier choisie parmi : une cellule cancéreuse, notamment une cellule cancéreuse formant une tumeur solide ou étant impliquée dans un cancer du sang ; une cellule immunitaire notamment choisie parmi : le lymphocyte T et la cellule NK ; un myofibroblaste, notamment un myofibroblaste impliqué dans un processus de fibrose ; un astrocyte, notamment un astrocyte activé lors d’un traumatisme cérébral ou de la moelle épinière et formant une cicatrice gliale empêchant la régénération ; et une cellule souche induite (iPS). Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet la cellule eucaryote animale transfectée/transduite telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est une cellule cancéreuse, notamment une cellule cancéreuse formant une tumeur solide ou étant impliquée dans un cancer du sang. En particulier, l’invention a également pour objet la cellule eucaryote animale transfectée/transduite telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est une cellule cancéreuse formant une tumeur solide. En particulier, l’invention a également pour objet la cellule eucaryote animale transfectée/transduite telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est une cellule cancéreuse étant impliquée dans un cancer du sang. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet la cellule eucaryote animale transfectée/transduite telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est une cellule immunitaire notamment choisie parmi : le lymphocyte T et la cellule NK. En particulier, l’invention a également pour objet la cellule eucaryote animale transfectée/transduite telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est un lymphocyte T ou une cellule NK. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet la cellule eucaryote animale transfectée/transduite telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est un myofibroblaste. En particulier, l’invention a également pour objet la cellule eucaryote animale transfectée/transduite telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est un myofibroblaste impliqué dans un processus de fibrose. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet la cellule eucaryote animale transfectée/transduite telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est un astrocyte, notamment un astrocyte activé lors d’un traumatisme cérébral ou de la moelle épinière et formant une cicatrice gliale empêchant la régénération. En particulier, l’invention a également pour objet la cellule eucaryote animale transfectée/transduite telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est un astrocyte activé lors d’un traumatisme cérébral ou de la moelle épinière formant une cicatrice gliale empêchant la régénération. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet la cellule eucaryote animale transfectée/transduite telle que décrite ci-dessus, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale est une cellule souche induite (iPS). Selon un autre aspect de l’invention, celle-ci a pour objet une cellule eucaryote animale transduite telle que décrite ci-dessus pour son utilisation en thérapie cellulaire, en particulier pour traiter une pathologie choisie parmi : un cancer, une leucémie et une fibrose. Selon un autre mode de réalisation, l’invention a pour objet la cellule eucaryote animale transfectée/transduite telle que décrite ci-dessus pour son utilisation telle que décrite ci-dessus pour traiter une pathologie choisie parmi : un cancer, une leucémie et une fibrose. En particulier, l’invention a pour objet la cellule eucaryote animale transfectée/transduite telle que décrite ci-dessus pour son utilisation telle que décrite ci-dessus pour traiter un cancer. En particulier, l’invention a pour objet la cellule eucaryote animale transfectée/transduite telle que décrite ci-dessus pour son utilisation telle que décrite ci-dessus pour traite une leucémie. L’expression « thérapie cellulaire » désigne une méthode dite de « biothérapies » laquelle vise à soigner un organe ou un organisme par l’apport de cellules thérapeutiques pour remplacer, suppléer ou tuer des cellules défaillantes. Alternativement et selon ce même aspect, l’invention a pour objet une méthode de traitement d’une pathologie choisie parmi : un cancer, une leucémie et une fibrose, ladite méthode comprenant l’administration d’une cellule eucaryote animale transfectée/transduite selon l’invention (ou d’une composition pharmaceutique comprenant au moins une cellule eucaryote animale transfectée/transduite selon l’invention et un excipient pharmaceutiquement acceptable) à un patient qui en a besoin. Avec l’aide des outils de l’invention, celle-ci permet la mise en œuvre de thérapies cellulaires efficaces et sûres. Notamment, celles-ci peuvent exploiter la technologie dite de safety switch ou d’interrupteur de sécurité , qui sous l’action du bon stimulus (et uniquement du bon stimulus) permet l’activation du promoteur inductible de ladite cassette d’expression et/ou de lever l’inhibition de la traduction, rendant possible l’expression du transgène toxique ou suicide. Dans ce cas et à titre d’exemple, l’emploi thérapeutique d’une cellule immunitaire : modifiée et armée pour cibler et détruire des cellules cancéreuses ; et transduite selon l’invention avec un transgène toxique ou suicide, va, après son administration à un patient qui en a besoin, jouer son rôle de ciblage et de destruction des cellules cancéreuses. Seulement et si cette même cellule immunitaire devient dysfonctionnelle, il sera alors possible de la détruire afin d’éviter des effets adverses, et ce, grâce aux systèmes de sécurité qu’apportent l’invention (contrôle de l’induction de la transcription et/ou contrôle de l’inhibition de la traduction). À tout égard, il convient de noter que les différents aspects de l’invention, tout comme les différents modes de réalisation de celle-ci sont interdépendants. Ces derniers peuvent donc être combinés entre eux à foison autant que nécessaire pour obtenir des aspects et/ou des modes de réalisation préférés de l’invention non explicitement décrits. Ceci est également valable pour l’ensemble des définitions fourni dans la présente description, lequel s’applique à tous les aspects de l’invention et ses modes de réalisation. En outre, la présente invention est illustrée, sans toutefois s’y limiter, par les figures et exemples suivants. LISTE DES FIGURES [Fig 1] FIG. 1 . Production d’un vecteur pLV exprimant Noxa en cellules HEK-293T. Des particules recombinantes des vecteurs pLV-2xAARE YB_TATA -GFP-p2a-Luc (GFP) (SEQ ID NO : 4 591) et pLV-2xAARE YB_TATA -GFP-p2a-Noxa (Noxa) (SEQ ID NO : 4 592) ont été produites et titrées en cellules HEK-293T. Les surnageants concentrés ont été titrés par mesure des génomes intégrés en cellules HEK-293T transduites avec des dilutions de ces vecteurs. Le graphique indique que les titres de chacun des deux vecteurs sont équivalents. Chaque point représente une production indépendante. Statistique, t-test. [Fig 2] FIG. 2 . Étude de l’induction de mort cellulaire par l’expression de Noxa en cellules NK-92. ( a ) Mesure du taux de mortalité en cellules NK-92 transduites avec les vecteurs, pLV-2xAARE YB_TATA -GFP-p2a-Luc (GFP) (SEQ ID NO : 4 591) ou pLV-2xAARE YB_TATA -GFP-p2a-Noxa (Noxa) (SEQ ID NO : 4 592), 24h après traitement au DMSO ou à l’artésunate (2 µM). ( b ) Mesure du taux de mortalité en cellules NK-92 transduites avec les vecteurs, pLV-2xAARE YB_TATA -GFP-p2a-Luc (GFP) (SEQ ID NO : 4 591) ou pLV-2xAARE YB_TATA -GFP-p2a-Noxa (Noxa) (SEQ ID NO : 4 592), 48h après traitement au DMSO ou à l’artésunate (2 µM). Chaque point représente une expérience indépendante de mesure du taux de mortalité cellulaire par cytométrie après marquage de l’annexine V et à l’iodure de propidium. Statisitique, one-way ANOVA. [Fig 3] FIG. 3 . Étude de l’induction de mort cellulaire par l’expression de Noxa en lymphocytes T humains. Mesure du taux de mortalité en lymphocytes transduits avec les vecteurs, pLV-2xAARE YB_TATA -GFP-p2a-Luc (GFP) (SEQ ID NO : 4 591) ou pLV-2xAARE YB_TATA -GFP-p2a-Noxa (Noxa) (SEQ ID NO : 4 592), 24h après traitement au DMSO ou à l’artésunate (2 µM). Chaque point représente la mesure du taux de mortalité cellulaire par cytométrie après marquage de l’annexine V et à l’iodure de propidium sur un donneur différent. Statistique, one-way ANOVA. EXEMPLES - PRODUCTION DE VECTEURS TOXIQUES MATERIELS & METHODES Clonage des plasmides lentiviraux Les plasmides lentiviraux utilisés dans les expériences ont été clonés par linéarisation enzymatique et re-circularisation par homologie grâce au protocole de NEBuilder HiFi DNA Assembly (New England Biolabs) en insérant des séquences synthétisées (Twist Bioscience) dans un plasmide porteur du génome lentiviral auto-inactivant de deuxième génération (pLV(SIN) ; SEQ ID NO : 2 741). Culture cellulaire Les cellules ont été cultivées en incubateur à atmosphère humidifiée et contrôlée à 37°C et 5% CO 2 . Les HEK-293T ( Human Embryonic Kidney , ATTC–CRL-11268) ont été cultivées en milieu High Glucose Dulbecco’s modified Eagle’s medium (DMEM, Thermo Fischer) contenant 10% de sérum de veau fœtal (SVF) et 100 U/mL de Pénicilline/Streptomycine. L’induction du stress a été réalisée par traitement à la tunicamycine (Sigma Aldrich). Les cellules NK-92 sont une lignée cellulaire cultivée en suspension dérivée de lymphocytes NK d’un patient atteint de lymphome non-Hodgkinien (ATCC, CRL-2407). Ces cellules ont été ensemencées à une densité de 200 000 cellules/mL et cultivées en milieu RPMI + Glutamax (ThermoFisher, Ref : 61870-01), 20% de SVF et 1% de pénicilline/streptomycine. Elles ont été passées tous les 3 à 4 jours. Les lymphocytes T primaires isolés du sang de donneurs sains ont été cultivés dans du milieu exempt de sérum et sans apport nourricier (SFM) GIBCO OpTmizer™ CTS™ (Thermo Fischer) complémenté en Glutamax (Thermo Fischer) et avec 100 U/mL de Pénicilline/Streptomycine. Production de vecteurs lentiviraux Les particules lentivirales non-réplicatives ont été obtenues grâce au protocole de production de deuxième génération décrit par Zennou et al. en 2001 ( Nat Biotechnol . 2001 May;19(5):446-50). Des cellules HEK 293T ont été ensemencées sur des supports adaptés à la culture cellulaire et de façon à atteindre une confluence de 50 à 60% après 24 heures de culture. Le lendemain, les cellules ont été co-transfectées, par la méthode de précipitation au phosphate de calcium, avec le plasmide codant le génome lentiviral (pLV ou pLVi) et deux plasmides transcomplémentants codants pour les enzymes et protéines structurelles du VIH-1 (p8.92 ; SEQ ID NO : 4 596 ou 4 597), et la glycoprotéine d’enveloppe du virus de la stomatite vésiculaire (pVSVg ; SEQ ID NO : 4 595). La co-transfection a été réalisée au ratio plasmidique 2 : 2 : 1. Les cellules transfectées ont été cultivées 5 heures au contact du précipité puis le milieu de culture a été renouvelé. Le surnageant contenant les particules lentivirales a été récolté 48 heures plus tard. La suspension lentivirale a été traitée à la DNAse I pour éliminer les plasmides persistants, filtrée (porosité de la membrane 0,2 µm) puis ultra-centrifugée à 60 000g pendant 90 minutes à 4°C. Les culots de particules ont été repris dans un volume de tampon phosphate salin (PBS) correspondant à une concentration d’un facteur 1 000. Les suspensions obtenues ont été aliquotées et conservées à -80°C jusqu’à utilisation. Titration La concentration en particules lentivirales a été déterminée par quantification de la protéine de capside lentivirale p24. Pour cela, un aliquot de suspension lentivirale a été décongelé, lysé et dilué d’après le protocole fournisseur du kit de titration HIV-1 p24 Antigen ELISA 2.0 (Zeptometrix réf. 0801008). La concentration de p24 obtenue a été exprimée en pg/µL dont l’équivalence est 1 pg de p24 pour 104 particules physiques lentivirales pseudotypées VSVg (Dull, T et al. J Virol . 1998 Nov;72(11):8463-71). Des tests peuvent préciser ces valeurs mais, en moyenne, 1% des particules physiques obtenues sont infectieuses soit 1 pg ≈ 100 unités de transduction (TU). Transduction Pour intégrer un transgène par infection d’un vecteur lentiviral, la quantité de particules nécessaires à obtenir la multiplicité d’infection voulue (ratio vecteur : cible) a été diluée dans du milieu de culture. Cette suspension lentivirale a été mise en contact des cellules cibles. Les cellules infectées ont été cultivées pendant au moins 24 heures. Selon la cassette promoteur/gène intégrée, l’expression du transgène a pu être observée ou mesurée dès le lendemain par microscopie, cytométrie ou analyse biochimique. Établissement d’une lignée KRAB (CRISPRi) Des cellules HEK 293T ont été transduites avec un vecteur lentiviral (SEQ ID NO : 4 551) véhiculant les cassettes d’expression constitutive : de la protéine de fusion dCas9-KRAB (SEQ ID NO : 4 548) fusionnée par un peptide 2A (SEQ ID NO : 4 601) au gène de résistance à la blasticidine (BlastR) (SEQ ID NO : 4 550) sous le contrôle du Promoteur minimal eF-1α (SEQ ID NO : 4 542) ; et de l’ARN guide spécifique du promoteur ciblé (SEQ ID NO : 4 540) sous le contrôle du promoteur U6 (SEQ ID NO : 4 539). Deux jours plus tard, les cellules transduites ont été sélectionnées par traitement à la blasticidine (2 µg/mL). Les cellules ont été clonées par dilution limite et chaque clone a été caractérisé. Établissement d’une lignée KRAB ( CRISPRi ) et DNMT ( CRISRPm ) Des cellules HEK 293T sont transduites avec un vecteur lentiviral (SEQ ID NO : 4 590) véhiculant les cassettes d’expression constitutive : de la protéine de fusion KRAB-dCas9-DNMT3A-L (SEQ ID NO : 4 578) fusionnée par un peptide 2A (SEQ ID NO : 4 601) au gène de résistance à la blasticidine (BlastR) (SEQ ID NO : 4 550) sous le contrôle du Promoteur minimal eF-1α (SEQ ID NO : 4 542) ; et de l’ARN guide spécifique du promoteur ciblé (SEQ ID NO : 4 540) sous le contrôle du promoteur U6 (SEQ ID NO : 4 539). Deux jours plus tard, les cellules transduites sont sélectionnées par traitement à la blasticidine (2 µg/mL). Les cellules HEK-CRISPRi/m SV40 sont clonées par dilution limite et chaque clone est caractérisé. Analyse par cytométrie en flux En fin d’expérience, les cellules en culture ont été récoltées et rincées au PBS. Elles ont ensuite été incubées 30 minutes avec les anticorps de marquages de surface et le marqueur de viabilité Live-or-Dye 405/452 (Biotium) selon les recommandations des fabricants respectifs. Les cellules ont été rincées puis fixées dans du PBS avec 1% de paraformaldéhyde pendant 15 minutes à 4°C. Après rinçage, l’expression du transgène a été analysée au cytomètre MACSQuant Analyser 10 (Miltenyi). RESULTATS Deux vecteurs lentiviraux, pLV-2xAARE YB_TATA -GFP-p2a-nLuc (SEQ ID NO : 4 591) et pLV-2xAARE YB_TATA -GFP-p2a-Noxa (SEQ ID NO : 4 592) ont été produits en cellules HEK-293T. Ces vecteurs véhiculaient respectivement le transgène double rapporteur GFP-p2a-nLuc (SEQ ID NO : 4 602), ou le transgène rapporteur et proapoptotique GFP-p2a-Noxa (SEQ ID NO : 4 603), sous le contrôle du promoteur 2xAARE YB_TATA (SEQ ID NO : 12). Lors de trois expériences indépendantes de production de vecteurs, il a été mesuré des titres de particules recombinantes équivalents avec chacun des deux vecteurs pLV-2xAARE YB_TATA -GFP-p2a-nLuc (SEQ ID NO : 4 591) et pLV-2xAARE YB_TATA -GFP-p2a-Noxa (SEQ ID NO : 4 592) ( FIG. 1 ). Des cellules de la lignée Natural Killer humaine NK-92 (ATCC CRL 2407 and 2408) ont ensuite ont été transduites à MOI 10, puis traitées à l’artésunate ou avec le véhicule DMSO. Après 24h de traitement, il a été observé que l’artésunate induit une augmentation significative de la mort des cellules NK-92 transduites avec le vecteur pLV-2xAARE YB_TATA -GFP-p2a-Noxa (SEQ ID NO : 4 592), mais pas des cellules NK-92 transduites avec le vecteur contrôle pLV-2xAARE YB_TATA -GFP-p2a-nLuc (SEQ ID NO : 4 591) (Fig. 2a). De plus, un doublement de la mort des cellules NK-92 transduites avec le vecteur pLV-2xAARE YB_TATA -GFP-p2a-Noxa (SEQ ID NO : 4 592) a été observé après 48h de traitement à l’artésunate par rapport à seulement 24h de traitement, alors qu’aucun effet du même traitement n’a pu être mesuré dans ces cellules traitées au DMSO, ni dans les cellules NK-92 transduites avec le vecteur contrôle pLV-2xAARE YB_TATA -GFP-p2a-nLuc (SEQ ID NO : 4 591) (Fig. 2b). L’induction de l’expression de Noxa dans des lymphocytes T primaires humains a également été étudiée. Pour se faire, des cellules T de donneurs ont été transduites avec les vecteurs pLV-2xAARE YB_TATA -GFP-p2a-nLuc (SEQ ID NO : 4 591) ou pLV-2xAARE YB_TATA -GFP-p2a-Noxa (SEQ ID NO : 4 592) à MOI 10. Dans les cellules transduites avec le vecteur contrôle pLV-2xAARE YB_TATA -GFP-p2a-nLuc (SEQ ID NO : 4 591), aucune différence du taux de mortalité cellulaire n’a été mesurée après traitement à l’artésunate ou au DMSO. En revanche, la transduction de lymphocytes T avec le vecteur pLV-2xAARE YB_TATA -GFP-p2a-Noxa (SEQ ID NO : 4 592) a montré un doublement du taux de mortalité cellulaire en condition de traitement à l’artésunate mais pas après traitement au DMSO ( FIG. 3 ). Ces résultats ont ainsi démontré qu’étonnamment alors que l’induction de l’expression de la protéine Noxa dans les cellules HEK-293T n’induit pas la mort des cellules productrices du vecteur lentiviral de l’invention ; cette même expression dans les cellules NK-92 et dans les lymphocytes T a induit efficacement la mort des cellules génétiquement modifiées. Génome vecteur comprenant un génome lentiviral dans lequel a été introduit une cassette d’expression comprenant un promoteur en amont d’un transgène toxique ou suicide codant une protéine Noxa, ledit transgène toxique ou suicide codant une protéine Noxa étant choisi parmi les séquences ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 1 ou dont l’acide nucléique code une protéine une protéine Noxa dont la séquence d’acides aminés est au moins 80% identique à la séquence SEQ ID NO : 2. Génome vecteur selon la revendication 1, dans lequel ledit promoteur est un promoteur constitutif notamment choisi parmi : le SV40 dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 3 ; le CMV dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 4 ; le UbC dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 5 ; le EF1-a core dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 6 ; le EF1-a long dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 7 ; le hPGK dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 8 ; le CAGG dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 9 ; le RSV dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 10 ; et le SFFV dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 11, ou dans lequel ledit promoteur est un promoteur inductible ou tissus spécifique notamment choisi parmi : le 2xAARE YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 12 ; le 2xAARE TK dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 13 ; le 4xSRE YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 14 ; le 9xHRE YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 17 ; le GRP78 YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 16 ; le promoteur du miR223 dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 17 ; et le miniCHAC1 YB_TATA dont l’acide nucléique a une séquence ayant au moins 80% d’identité avec l’acide nucléique de séquence SEQ ID NO : 18. Génome vecteur selon la revendication 1 ou 2, dans lequel ladite cassette d’expression comprend en outre une séquence codante ou non codante ayant des propriétés régulatrices au niveau post -transcriptionnel, ladite séquence codante ou non codante ayant des propriétés régulatrices au niveau post -transcriptionnel étant située à l’extrémité 5’ dudit transgène toxique ou suicide codant une protéine Noxa et étant en particulier choisie parmi les séquences ayant au moins 90% d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 73 à 99. Génome vecteur selon l’une quelconque des revendications 1 à 3, dans lequel l’orientation 5’ vers 3’ de la transcription de ladite cassette d’expression est inversée par rapport à l’orientation 5’ vers 3’ de la transcription dudit génome lentiviral, en particulier ladite cassette d’expression comprenant en outre à l’extrémité 3’ dudit transgène toxique ou suicide codant une protéine Noxa une séquence d’acides nucléiques permettant la transcription d’une queue polyA. Méthode de production de vecteurs lentiviraux comprenant un génome vecteur selon l’une quelconque des revendications 1 à 4, ladite méthode comprenant au moins les étapes : a. de co-transfection d’une cellule eucaryote animale appartenant à une lignée cellulaire choisie parmi : HEK 293T, HEK 293, CHO, GS-CHO, Free style 293-F cells (FS293), Viral Production Cells VPC et VPC 2.0, COS-1, HeLa, PS5.8 et PS46.2 avec : i. un plasmide comprenant un génome vecteur selon l’une quelconque des revendications 1 à 4 et les moyens de l’exprimer ; ii. un plasmide comprenant une protéine d’enveloppe virale et les moyens de l’exprimer ; et iii un plasmide comprenant les protéines de structures et les enzymes du VIH-1, et les moyens de l’exprimer, pour obtenir une cellule eucaryote animale transfectée ; b. de culture de ladite cellule eucaryote animale transfectée pour permettre la production de vecteurs lentiviraux comprenant un génome vecteur selon l’une quelconque des revendications 1 à 4 ; et c. de récolte et de purification desdits vecteurs lentiviraux. Méthode de production de vecteurs lentiviraux selon la revendication 5, dans laquelle ladite cellule eucaryote animale exprime au moins un complexe ribonucléoprotéique comprenant : une protéine fusion comprenant la fusion : d’une endonucléase Cas inactive (dCas), et d’un domaine de répression transcriptionnelle KRAB ou d’un domaine de méthylation choisi parmi : DNMT3A, DNMT3B, DNMT3A-L et DNMT3B-L ; ou une protéine fusion comprenant la fusion : d’un domaine de répression transcriptionnelle KRAB, d’une endonucléase Cas inactive (dCas), et d’un domaine de méthylation choisi parmi : DNMT3A, DNMT3B, DNMT3A-L, DNMT3B-L et MeCP2 ; et un ARN guide (ARNg) reconnaissant spécifiquement la séquence promotrice dudit promoteur inductible, ledit au moins un complexe ribonucléoprotéique dCas-KRAB/ARNg, dCas-DNMT3A/ARNg, dCas-DNMT3B/ARNg, dCas-DNMT3A-L/ARNg, dCas-DNMT3B-L/ARNg, KRAB-dCas-DNMT3A/ARNg, KRAB-dCas-DNMT3B/ARNg, KRAB-dCas-DNMT3A-L/ARNg, KRAB-dCas-DNMT3B-L/ARNg ou dCas-KRAB-MeCP2/ARNg étant en particulier exprimé stablement. Vecteur lentiviral comprenant un génome vecteur selon l’une quelconque des revendications 1 à 4. Utilisation in vitro d’un vecteur lentiviral selon la revendication 7 pour transduire une cellule eucaryote animale, ladite cellule eucaryote animale étant différente d’une cellule souche pluripotente ou totipotente, ou d’une cellule souche isolée à partir d’un tissu de l’organisme, en particulier ladite cellule eucaryote animale étant choisie parmi : une cellule cancéreuse, notamment une cellule cancéreuse formant une tumeur solide ou étant impliquée dans un cancer du sang ; une cellule immunitaire notamment choisie parmi : le lymphocyte T et la cellule NK ; un myofibroblaste, notamment un myofibroblaste impliqué dans un processus de fibrose ; un astrocyte, notamment un astrocyte activé lors d’un traumatisme cérébral ou de la moelle épinière et formant une cicatrice gliale empêchant la régénération ; et une cellule souche induite (iPS). Cellule eucaryote animale transduite par un vecteur lentiviral selon la revendication 7, ladite cellule eucaryote animale étant différente d’une cellule souche pluripotente ou totipotente, ou d’une cellule souche isolée à partir d’un tissu de l’organisme, ladite cellule eucaryote animale transduite étant en particulier choisie parmi : une cellule cancéreuse, notamment une cellule cancéreuse formant une tumeur solide ou étant impliquée dans un cancer du sang ; une cellule immunitaire notamment choisie parmi : le lymphocyte T et la cellule NK ; un myofibroblaste, notamment un myofibroblaste impliqué dans un processus de fibrose ; un astrocyte, notamment un astrocyte activé lors d’un traumatisme cérébral ou de la moelle épinière et formant une cicatrice gliale empêchant la régénération ; et une cellule souche induite (iPS). Cellule eucaryote animale transduite selon la revendication 9 pour son utilisation en thérapie cellulaire, en particulier pour traiter une pathologie choisie parmi : un cancer, une leucémie et une fibrose.