Brevet FR3148441A1 — publié le 20241108

Méthode de détection de microalgues La présente invention concerne une méthode de détection d’au moins un microorganisme, de préférence une microalgue, dans un échantillon, de préférence un échantillon d’eau de mer, comprenant les étapes suivantes : filtration de l’échantillon, extraction, purification et amplification de l’ADN et détermination de la présence et/ou quantification du microorganisme à détecter dans l’échantillon. Le microorganisme est de préférence une microalgue du genre Ostreopsis , une microalgue de l’espèce O streopsis cf. siamensis ou une microalgue de l’espèce Ostreopsis cf. ovata . La présente invention a également pour objet un mélange d’amorces anti-sens approprié pour la détection d’une microalgue du genre Ostreopsis et/ou d’une microalgue de l’espèce Ostreopsis cf. ovata , un kit comprenant ledit mélange d’amorces anti-sens et leur utilisation pour la détection d’au moins une microalgue du genre Ostreopsis et/ou une microalgue de l’espèce Ostreopsis cf. ovata . Figure pour l'abrégé : néant Méthode de détection de microalgues Domaine de l’invention La présente invention concerne la détection de microorganismes, en particulier de microalgues, dans des échantillons prélevés dans la nature, par exemple des échantillons d’eau de mer. Arrière-plan technologique Le littoral basque regroupe un ensemble de plages parmi les plus touristiques de la côte Atlantique européenne qui accueille chaque été plus d’un million de personnes. Il constitue un linéaire de plus de 100 km de côte de part et d’autre de la frontière, majoritairement rocheux et abrite un patrimoine naturel remarquable, notamment du point de vue de la biodiversité. En 2020 et 2021, la côte basque a été le lieu de nombreux signalements, auprès du centre antipoison, de cas d’irritations respiratoire et cutané par des baigneurs ou des promeneurs ayant fréquenté les plages d'Hendaye à Biarritz durant l'été. Les analyses effectuées ont révélé l’efflorescence d’une microalgue appartenant au genre Ostreopsis , connue pour engendrer ce genre de troubles ORL ( Oto R hino L aryngologie ), notamment en Méditerranée. La présence concomitante de deux espèces Ostreopsis cf. siamensis et O. cf. ovata a été identifiée. Il est donc essentiel de disposer d’une méthode permettant de détecter efficacement ces microalgues, et plus généralement permettant de détecter des microorganismes susceptibles de présenter une toxicité pour l’homme. L’article de Penna et al. ( 2007, Journal of Plankton Research, vol. 29, n°1, 19-38 ) décrit un test basé sur une PCR qualitative et semi-quantitative pour la détection d’algues nuisibles, afin de pouvoir suivre leur développement dans la mer Méditerranée. Les auteurs décrivent les couples d’amorces utilisés pour détecter ces algues, dont les microalgues du genre Ostreopsis et les espèces Ostreopsis cf. ovata et Ostreopsis cf . siamensis . L’article de Drouet el al. ( 2021, Environmental Microbiology, vol. 23, 4956–4979 ) s’intéresse à la distribution et expansion potentielle d’ O s treopsis cf. s iamensis , comprenant l’analyse par PCR quantitative (qPCR) à partir de différents types d’échantillons d’eau de mer filtrés. Les amorces et conditions de PCR sont notamment telles que décrites dans Penna et al.. Il existe donc un besoin de disposer d’une méthode rapide de détection permettant de détecter et quantifier efficacement des microorganismes, en particulier des microalgues, dans des échantillons prélevés dans la nature, par exemple dans des échantillons d’eau de mer. Description de l’invention Les Inventeurs ont mis au point une méthode de détection améliorée de microorganismes, basée d’une part sur l’amélioration du rendement d’extraction de l’ADN présent dans l’échantillon de départ et sur l’utilisation d’un plasmide étalon comprenant une séquence consensus du microorganisme à détecter pour la quantification dudit microorganisme. En particulier, après filtration de l’échantillon, l’étape de lyse comprend avantageusement de placer le filtre dans un récipient en présence d’une solution de lyse, de sorte que le filtre et le rétentat présent sur le filtre soient au contact de la solution de lyse, sous agitation, puis de préférence de broyer mécaniquement le lysat ainsi obtenu. Un meilleur rendement d’extraction de l’ADN est ainsi obtenu. S’agissant de la quantification par qPCR, la méthode comprend avantageusement l’utilisation d’une gamme étalon obtenue par amplification de dilutions en série d’un plasmide étalon qui comprend une séquence consensus du microorganisme à détecter. Par ailleurs, s’agissant de la détection des microalgues du genre Ostreopsis ou de l’espèce Ostreopsis cf. ovata , les Inventeurs ont mis en évidence que le couple d’amorces utilisé dans l’art antérieur pour l’amplification de l’ADN de ces microalgues ne permet pas de détecter correctement l’espèce Os treopsis cf. ovata . En conséquence, les méthodes de détection connues sous-estiment la quantité de microalgues du genre Ostreopsis ou de l’espèce Ostreopsis cf. ovata présente dans un échantillon, voire concluent de manière erronée à son absence. Les Inventeurs ont alors mis au point un mélange d’amorces anti-sens original permettant d’améliorer la détection des microalgues du genre Ostreopsis et/ou de l’espèce Ostreopsis cf. ovata . Un premier objet de l’invention est une méthode de détection d’au moins un microorganisme dans au moins un échantillon, comprenant les étapes suivantes : filtration dudit échantillon, pour obtenir un rétentat comprenant des microorganismes, extraction de l’ADN des microorganismes du rétentat, pour obtenir une solution comprenant de l’ADN extrait, purification de l’ADN de la solution comprenant l’ADN extrait, pour obtenir une solution d’ADN purifié, amplification de l’ADN de la solution d’ADN purifié avec au moins un couple d’amorces spécifique du microorganisme à détecter, et détermination de la présence et/ou quantification du microorganisme à détecter dans l’échantillon. Le microorganisme à détecter est de préférence une microalgue du genre Ostreopsis , une microalgue de l’espèce O streopsis cf. siamensis ou une microalgue de l’espèce Ostreopsis cf. ovata . L’étape b) d’extraction comprend de préférence une étape de lyse chimique, pour obtenir un premier lysat et, optionnellement, une étape de lyse mécanique dudit premier lysat. L’étape de lyse chimique définie ci-dessus comprend de préférence de placer le filtre dans un récipient en présence d’une solution de lyse, de sorte que le filtre et le rétentat présent sur le filtre soient au contact de la solution de lyse et sous agitation. L’étape c) de purification comprend de préférence une étape de clarification et une étape de précipitation. L’étape d) comprend de préférence l’amplification de l’ADN d’au moins deux échantillons de référence, chaque échantillon de référence comprenant une concentration connue d’un plasmide, ledit plasmide comprenant une séquence consensus du microorganisme à détecter. Lorsque ledit au moins un microorganisme à détecter est une microalgue du genre Ostreopsis et/ou une microalgue de l’espèce Ostreopsis cf. ovata , le couple d’amorces dans l’étape d) comprend de préférence un mélange d’amorces anti-sens de séquence SEQ ID NO: 1. Un autre objet de l’invention est un mélange d’amorces anti-sens approprié pour la détection d’une microalgue du genre Ostreopsis et/ou d’une microalgue de l’espèce Ostreopsis cf. ovata , caractérisé en ce que les amorces anti-sens dudit mélange comprennent la séquence SEQ ID NO: 1. Un autre objet de l’invention est un kit approprié pour la détection d’une microalgue du genre Ostreopsis et/ou d’une microalgue de l’espèce Ostreopsis cf. ovata , ledit kit comprenant le mélange d’amorces anti-sens tel que défini ci-dessus. Un autre objet de l’invention concerne l’utilisation d’un mélange d’amorces anti-sens tel que défini ci-dessus ou d’un kit tel que défini ci-dessus, pour la détection d’au moins une microalgue du genre Ostreopsis et/ou d’au moins une microalgue de l’espèce Ostreopsis cf. ovata . Un autre objet de l’invention concerne un plasmide approprié pour la quantification d’une microalgue dans un échantillon, ledit plasmide comprenant la séquence consensus SEQ ID NO: 13 ou SEQ ID NO: 14. Microorganisme La présente invention permet de détecter la présence d’au moins un microorganisme dans un échantillon. Le microorganisme peut par exemple être un microorganisme toxique ou à risque de toxicité, notamment pour l’homme, et/ou un microorganisme présentant un risque pour l’environnement. Le microorganisme est de préférence une microalgue. Par « microalgue », on désigne ici une algue microscopique. La microalgue est par exemple une algue du genre Ostreopsis , Alexandrium , Dinophysis , Gambierdiscus ou/et Pseudo-nitzschia . La microalgue est de préférence une microalgue du genre Ostreopsis . La microalgue du genre Ostreopsis est par exemple de l’espèce O . siamensis , O . ovata , O. lenticularis , O. heptagona , O. mascarenensis , O. l abens , O. belizeana , O. carribeana , O. marina , O. fattorussoi ou O. rhodesiae . La microalgue peut également être une microalgue apparentée à ces espèces, telle que O. cf. siamensis , O. cf. ovata ou encore O. cf. lenticularis . Echantillon L’échantillon est un échantillon susceptible de comprendre le ou les microorganismes à détecter, tels que définis ci-dessus, en particulier au moins une microalgue telle que définie ci-dessus. L’échantillon est de préférence un échantillon liquide. Si l’échantillon de départ est un substrat solide, par exemple un substrat solide comprenant un biofilm susceptible de comprendre le ou les microorganismes à détecter, ledit biofilm est de préférence remis en suspension dans un milieu liquide, telle que de l’eau de mer filtrée, pour obtenir un échantillon liquide. L’échantillon peut être un échantillon prélevé dans la nature, par exemple un échantillon d’eau de mer, un échantillon de macroalgue, un substrat rocheux ou un substrat artificiel (par exemple une grille). L’échantillon peut également être un échantillon prélevé dans un milieu de culture, par exemple un milieu de culture d’au moins un microorganisme tel que défini ci-dessus, notamment d’au moins une microalgue telle que définie ci-dessus. L’échantillon est de préférence un échantillon d’eau de mer. L’échantillon d’eau de mer est par exemple prélevé en sub-surface (en particulier de -20 cm à -30 cm) dans une colonne d’eau profonde de 1 m à 1,5 m. De préférence, le flacon est introduit tête en bas à la profondeur du prélèvement et il est rempli en le tournant sur le côté puis vers le haut, pour éviter toutes contaminations. Sur certaines plages, où la colonne d’eau n’atteint pas 1m, l’échantillon doit être prélevé à une profondeur inférieure. Le volume d’échantillon d’eau de mer prélevé est de préférence d’au moins 1L. De préférence, l’échantillon ne subit de traitement avant la mise en œuvre de la méthode selon l’invention. En particulier, l’échantillon n’est de préférence pas traité avec du lugol acide, ni avec du formaldéhyde. Amorces et couples d’amorces Le microorganisme à détecter est de préférence détecté par amplification de son ADN, après extraction. L’amplification de l’ADN est effectuée par toute méthode appropriée bien connue de l’homme du métier, telle que la PCR (« P olymerase Chain Reaction » ou « r éaction en chaîne par polymérase » ) ou par qPCR (PCR quantitative). La région d’ADN amplifiée est de préférence une région conservée au sein du genre ou de l’espèce du microorganisme à détecter. La région d’ADN amplifiée est de préférence une région de l’ADN ribosomique (ADNr). Un couple d’amorces spécifique du microorganisme à détecter est utilisé pour permettre d’amplifier l’ADN dudit microorganisme, si présent dans l’échantillon, afin de pouvoir détecter sa présence ou non dans l’échantillon de départ. Un couple d’amorces comprend une amorce sens et une amorce anti-sens. Un couple d’amorces approprié pour détecter une microalgue du genre Ostreopsis permet, de préférence, d’amplifier la région ou une partie de la région ITS 1 et 5.8 S d’une microalgue du genre Ostreopsis . Un couple d’amorces approprié pour détecter une microalgue de l’espèce Ostreopsis cf. siamensis permet, de préférence, d’amplifier les régions ou une partie des régions ITS1 et 5.8S de la microalgue Ostreopsis cf. siamensis . L’amorce sens et/ou l’amorce anti-sens sont spécifiques d’ Ostreopsis cf. siamensis . Dans un mode de réalisation préféré, l’amorce sens est spécifique d’une microalgue de l’espèce Ostreopsis cf. siamensis et l’amorce anti-sens est spécifique d’une microalgue du genre Ostreopsis . Un couple d’amorces approprié pour détecter une microalgue de l’espèce Ostreopsis cf. ovata permet, de préférence, d’amplifier les régions ou une partie des régions ITS1 et 5.8S de la microalgue Ostreopsis cf. ovata . L’amorce sens et/ou l’amorce anti-sens sont spécifiques d’ Ostreopsis cf. ovata. Dans un mode de réalisation, l’amorce sens est spécifique d’une microalgue d’ Ostreopsis cf. ovata et l’amorce anti-sens est spécifique d’une microalgue du genre Ostreopsis ou de l’espèce Ostreopsis cf. ovata . Lorsque la méthode concerne la détection de plusieurs espèces de microorganisme du même genre, il peut être avantageux d’utiliser une amorce commune spécifique du genre desdits microorganismes et une amorce spécifique à l’espèce, afin de diminuer le nombre d’amorces utilisées. Une amorce selon l’invention comprend de préférence au moins 10 nucléotides, de préférence au moins 15 nucléotides, plus préférentiellement au moins 20 nucléotides et/ou au plus 50 nucléotides, de préférence au plus 40 nucléotides, au plus 30 nucléotides. Typiquement, une amorce selon l’invention comprend 18 à 28 nucléotides, de préférence 20 à 25 nucléotides. Un couple d’amorces habituellement utilisé dans la littérature pour détecter une microalgue du genre Ostreopsis comprend l’amorce sens de séquence SEQ ID NO: 4 et l’amorce anti-sens de séquence SEQ ID NO: 5. Cependant, les Inventeurs ont mis en évidence que l’amorce anti-sens de séquence SEQ ID NO: 5 ne permet pas de détecter correctement Ostreopsis cf. ovata . De ce fait, la détection de microalgues du genre Ostreopsis et de microalgues de l’espèce Ostreopsis cf. ovata en utilisant cette amorce peut conclure de manière erronée à leur absence et sous-évalue la quantité de ces microalgues présente dans un échantillon. Les Inventeurs ont alors mis au point un mélange original d’amorces anti-sens, ledit mélange comprenant des amorces anti-sens intégrant des variantes nucléotidiques permettant de détecter efficacement la microalgue de l’espèce Ostreopsis cf. ovata , et donc de ne plus sous-estimer le nombre de microalgues du genre Ostreopsis présentes dans un échantillon, ni le nombre de microalgues de l’espèce Ostreopsis cf. ovata . Les variantes nucléotidiques présentes dans la séquence des amorces dudit mélange permettent avantageusement d’englober l’intégralité des polymorphismes observés sur les séquences d’ O str e opsis . cf. ovata . La présente invention a ainsi pour objet un mélange d’amorces anti-sens approprié pour détecter une microalgue du genre Ostreopsis ou une microalgue de l’espèce Ostreopsis cf. ovata , caractérisé en ce que les amorces dudit mélange comprennent la séquence CCA R GA R Y ATGCCTACATTCAA (séquence SEQ ID NO: 1), dans laquelle R représente G ou A et Y représente T ou C. Le mélange d’amorces anti-sens tel que défini ci-dessus comprend de préférence au moins deux amorces anti-sens, plus préférentiellement au moins quatre amorces anti-sens, au moins six amorces anti-sens ou au moins sept amorces anti-sens, sélectionnées dans le groupe consistant en : CCA G GA G T ATGCCTACATTCAA (séquence SEQ ID NO: 5), CCA G GA GC ATGCCTACATTCAA (séquence SEQ ID NO: 6), CCA G GA A T ATGCCTACATTCAA (séquence SEQ ID NO: 7), CCA G GA A C ATGCCTACATTCAA (séquence SEQ ID NO: 8), CCA A GA G T ATGCCTACATTCAA (séquence SEQ ID NO: 9), CCA A GA G C ATGCCTACATTCAA (séquence SEQ ID NO: 10), CCA A GA AT ATGCCTACATTCAA (séquence SEQ ID NO: 11) et CCA A GA AC ATGCCTACATTCAA (séquence SEQ ID NO: 12). De préférence, le mélange d’amorces anti-sens tel que défini ci-dessus comprend les amorces anti-sens de séquence SEQ ID NO: 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11 et 12. Les amorces anti-sens du mélange sont de préférence présentes en quantité égale dans ledit mélange. Un exemple de couple d’amorces permettant de détecter une microalgue du genre Ostreopsis comprend ainsi l’amorce sens de séquence SEQ ID NO: 4 et une amorce anti-sens de séquence SEQ ID NO: 1. De préférence, plusieurs couples d’amorces comprenant la même amorce sens sont utilisés pour détecter une microalgue du genre Ostreopsis . Ces couples d’amorce comprennent par exemple l’amorce sens de séquence SEQ ID NO: 4 et un mélange d’amorces anti-sens comprenant la séquence SEQ ID NO: 1 tel que défini ci-dessus, de préférence les amorces anti-sens de séquences SEQ ID NO: 5 à 12. Ces couples d’amorces permettent d’amplifier un amplicon de 92 paires de bases. Un exemple de couple d’amorces permettant de détecter une microalgue de l’espèce Ostreopsis cf. siamensis comprend l’amorce sens de séquence SEQ ID NO: 2 et l’amorce anti-sens de séquence SEQ ID NO: 5. Ce couple d’amorce permet d’amplifier un amplicon de 223 paires de bases. Un exemple de couple d’amorces permettant de détecter une microalgue de l’espèce Ostreopsis cf. ovata comprend l’amorce sens de séquence SEQ ID NO: 3 et une amorce anti-sens de séquence SEQ ID NO: 1. De préférence, plusieurs couples d’amorces comprenant la même amorce sens sont utilisés pour détecter une microalgue de l’espèce Ostreopsis cf. ovata . Ces couples d’amorce comprennent par exemple l’amorce sens de séquence SEQ ID NO: 3 et un mélange d’amorces anti-sens comprenant la séquence SEQ ID NO: 1 tel que défini ci-dessus, de préférence les amorces anti-sens de séquences SEQ ID NO: 5 à 12. Ces couples d’amorces permettent d’amplifier un amplicon de 210 paires de bases. Plasmide étalon La présente invention concerne également un plasmide comprenant une séquence consensus du microorganisme à détecter, servant à réaliser une gamme étalon permettant la quantification dudit microorganisme dans l’échantillon. Ce plasmide est également appelé « plasmide étalon » par la suite. Si plusieurs microorganismes sont à détecter, la méthode de détection selon l’invention comprend de préférence l’utilisation de plusieurs plasmides étalon, chaque plasmide étalon correspondant à un microorganisme à détecter. Par « séquence consensus », on désigne ici une séquence nucléotidique comprenant les nucléotides les plus fréquents présents à chaque position. Une séquence consensus d’un genre ou d’une espèce de microorganisme est de préférence obtenue par un alignement de multiples séquences provenant de différents individus de ce genre ou de cette espèce de microorganisme. La séquence consensus est de préférence une région conservée au sein du genre ou de l’espèce du microorganisme à détecter. Un avantage du plasmide étalon selon l’invention est que la quantification est stable dans le temps et comparable à des équivalents cellulaires. La présente invention concerne particulièrement un plasmide comprenant une séquence consensus d’une microalgue, en particulier utilisé pour la quantification de ladite microalgue dans un échantillon. La présente invention concerne particulièrement un plasmide comprenant une séquence consensus d’ O str e opsis cf. siamensis , de préférence utilisé pour la quantification de la microalgue Ostreopsis ou Ostreopsis cf. siamensis dans un échantillon. La présente invention concerne également un plasmide comprenant une séquence consensus d’ Ostreopsis cf. ovata , de préférence utilisé pour la quantification de la microalgue Ostreopsis ou Ostreopsis cf. ovata dans un échantillon. Par exemple, une séquence consensus de la microalgue O streopsis cf. siamensis comprend ou consiste en la séquence SEQ ID NO: 13. Par exemple, une séquence consensus de la microalgue O streopsis cf. ovata comprend ou consiste la séquence SEQ ID NO: 14. Le plasmide dans lequel est insérée la séquence consensus peut être tout plasmide approprié bien connu de l’homme du métier permettant l’insertion de la séquence consensus telle que définie ci-dessus. Le plasmide tel que défini ci-dessus comprend de préférence une séquence consensus du microorganisme à détecter précédée et succédée de 20 à 50 nucléotides et une région de sélection à un antibiotique, par exemple l’ampicilline. Le plasmide tel que défini ci-dessus est par exemple le plasmide pEX-A128. Le plasmide tel que défini ci-dessus peut être utilisé pour établir une gamme étalon, permettant de quantifier le microorganisme présent dans l’échantillon. L’invention concerne également l’utilisation d’un plasmide tel que défini ci-dessus pour la quantification d’au moins un microorganisme dans un échantillon. L’invention concerne particulièrement l’utilisation d’un plasmide tel que défini ci-dessus pour établir une gamme étalon pour la quantification d’au moins un microorganisme dans un échantillon. De préférence, le plasmide comprend la séquence SEQ ID NO: 13 pour la quantification de la microalgue O streopsis ou O streopsis cf. siamensis . De préférence, le plasmide comprend la séquence SEQ ID NO: 14 pour la quantification de la microalgue O streopsis ou O streopsis cf. ovata . On définit ainsi ici un échantillon de référence. Un échantillon de référence comprend une concentration connue (par exemple en nombre de copies par volume) d’un plasmide comprenant une séquence consensus d’un microorganisme à détecter. Afin de réaliser une gamme étalon, l’ADN d’au moins deux échantillons de référence (de préférence au moins trois échantillons de référence, au moins quatre échantillons de référence ou au moins cinq échantillons de référence) comprenant des concentrations différentes dudit plasmide est amplifié en même temps que l’ADN du ou des échantillons à analyser. L’ADN amplifié des échantillons de référence permet ainsi de constituer une gamme étalon. La gamme étalon comprend par exemple des points correspondant à l’ADN amplifié d’échantillons de référence, lesdits échantillons de référence comprenant, avant amplification, des dilutions en série du plasmide, par exemple des dilutions au 10 ème du plasmide. Le premier point de la gamme étalon peut par exemple correspondre à un échantillon de référence comprenant une concentration de départ (i.e. avant amplification) en plasmide comprise de 10 6 à 10 7 copies de plasmides par µl, par exemple 4.10 6 copies /µl. Un exemple de gamme étalon comprend sept points correspondant à des dilutions au 10 ème , allant de 4.10 6 copies/µl à 4 copies/µl. Le nombre de copies du plasmide peut être calculé en utilisant la formule suivante : Nombre de copies = (A × 6,022.10 23 )/(L × 10 9 ×660) dans laquelle A est la masse de plasmide en ng, L est la longueur (en bases) du plasmide comprenant la séquence consensus, 6,022.10 23 est le nombre d’Avogadro et 660 est le poids moléculaire moyen d’une paire de base. Méthode de détection d’au moins un microorganisme dans au moins un échantillon La présente invention a également pour objet une méthode de détection d’au moins un microorganisme dans au moins un échantillon, comprenant les étapes suivantes : filtration dudit échantillon, pour obtenir un rétentat comprenant des microorganismes, extraction de l’ADN des microorganismes du rétentat, pour obtenir une solution comprenant de l’ADN extrait, purification de l’ADN de la solution comprenant de l’ADN extrait, pour obtenir une solution d’ADN purifié, amplification de l’ADN de la solution d’ADN purifié avec au moins un couple d’amorces spécifiques du microorganisme à détecter, et détermination de la présence et/ou quantification du microorganisme à détecter dans l’échantillon. La méthode selon l’invention peut comprendre de détecter un ou plusieurs microorganismes dans un ou plusieurs échantillons. Si l’échantillon peut comprendre ou non le ou les microorganismes à détecter, la méthode telle que définie ci-dessus est une méthode de détection d’au moins un microorganisme susceptible d’être présent dans l’échantillon. L’échantillon est tel que défini ci-dessus dans la partie « Echantillon ». L’échantillon est de préférence un échantillon d’eau de mer. Le microorganisme est notamment tel que défini ci-dessus. Le microorganisme est de préférence une microalgue telle que définie ci-dessus, telle qu’une microalgue du genre Ostreopsis , une microalgue de l’espèce Ostreopsis cf. siamensis ou une microalgue de l’espèce Ostreopsis cf. ovata . La méthode de détection telle que définie ci-dessus concerne par exemple la détection d’une, deux ou trois microalgues sélectionnées dans le groupe consistant Ostreopsis , Ostreopsis cf. siamensis et Ostreopsis cf. ovata . Etape a) L’étape a) comprend la filtration de l’échantillon, pour obtenir un rétentat comprenant des microorganismes. Les microorganismes du rétentat sont l’ensemble des microorganismes présents dans l’échantillon. Ces microorganismes peuvent comprendre ou non le ou les microorganismes à détecter. Cette étape de filtration permet de concentrer l’échantillon. Le filtre est en effet approprié pour retenir les microorganismes présents dans l’échantillon et, optionnellement, l’ADN extracellulaire présent dans l’échantillon. Le rétentat comprend ainsi les microorganismes présents dans l’échantillon et, optionnellement, l’ADN extracellulaire présent dans l’échantillon. Le volume d’échantillon filtré est par exemple compris de 0,25 à 1 litre, de préférence de 0,5 à 1 litre. Le volume d’échantillon filtré est par exemple égal à 1 litre. Le filtre a de préférence des pores d’un diamètre compris de 0,45 µm à 10 µm, de préférence de 3 µm à 10 µm. Le filtre a par exemple des pores d’un diamètre de 3 µm. Le filtre est de préférence un filtre en polycarbonate ou en nylon. Un filtre en polycarbonate, de préférence avec des pores d’un diamètre de 3 µm, permet avantageusement de récupérer à la fois les microorganismes et l’ADN extracellulaire présents dans l’échantillon. Le filtre a de préférence un petit diamètre afin de faciliter l’étape d’extraction de l’ADN, en particulier l’étape de lyse. Le filtre a par exemple un diamètre compris entre 40 mm et 50 mm, par exemple un diamètre de 47 mm. Etape b) L’étape b) comprend l’extraction de l’ADN des microorganismes du rétentat, pour obtenir une solution comprenant de l’ADN extrait. L’étape b) d’extraction de l’ADN des microorganismes du rétentat comprend : une étape de lyse chimique et, optionnellement enzymatique, notamment au moyen d’une solution de lyse, pour obtenir un premier lysat, et optionnellement, une étape de lyse mécanique du premier lysat, par exemple par broyage, pour obtenir un deuxième lysat. L’étape de lyse chimique et, optionnellement enzymatique, comprend de préférence de placer le filtre dans un récipient en présence d’une solution de lyse, de sorte que le filtre et le rétentat présent sur le filtre soient au contact de la solution de lyse. Le récipient est mis, de préférence sous agitation, de préférence au moyen d’un agitateur vortex, par exemple pendant une minute. Le fait de placer le filtre lui-même dans la solution de lyse permet d’augmenter le rendement de l’extraction. Toute solution de lyse bien connue de l’homme du métier pour l’extraction d’ADN peut être utilisée. Par exemple, la solution de lyse comprend au moins un agent chaotropique, au moins un agent dénaturant et/ou au moins un détergent. Par exemple, la solution de lyse comprend du chlorure de guanidinium et/ou du SDS (dodécylsulfate de sodium) et/ou du CTAB (bromure de cétyltriméthylammonium). La solution de lyse peut en outre comprendre au moins une enzyme, par exemple une protéinase K et/ou du lysozyme. Dans ce cas, il s’agit à la fois d’une lyse chimique et enzymatique. L’étape d’extraction comprend de préférence en outre une étape de lyse mécanique du premier lysat, par exemple par broyage, pour obtenir un deuxième lysat. L’étape de lyse mécanique, en particulier par broyage, permet également d’augmenter le rendement de l’extraction. L’étape de lyse mécanique est par exemple effectuée en plaçant le premier lysat dans un récipient en présence de billes, puis en broyant l’ensemble. Les billes sont par exemple des billes de verre, par exemple d’un diamètre de 0,5 mm. Le broyage peut par exemple comprendre plusieurs cycles, par exemple 3 cycles de broyage, par exemple d’une durée de 30 secondes, par exemple à environ 8000 g (par exemple à 5500 rpm dans un broyeur Precellys Evolution) entrecoupés d’une pause, par exemple de 30 secondes. La solution comprenant l’ADN extrait est la solution obtenue à l’issue de l’étape de lyse chimique et, optionnellement enzymatique, i.e. le premier lysat, ou, si une étape de lyse mécanique est réalisée, la solution obtenue à l’issue de l’étape de lyse mécanique, i.e. le deuxième lysat. Dans un mode de réalisation préféré, l’étape b) d’extraction de l’ADN des microorganismes du rétentat comprend : une étape de lyse chimique, au moyen d’une solution de lyse, pour obtenir un premier lysat, et une étape de lyse mécanique du premier lysat, de préférence par broyage, pour obtenir un deuxième lysat. Dans ce mode de réalisation préféré, il n’y a donc pas de lyse enzymatique. Etape c) L’étape c) comprend la purification de l’ADN de la solution comprenant l’ADN extrait, pour obtenir une solution d’ADN purifié. L’étape c) de purification permet d’obtenir une solution d’ADN purifié, en particulier qui est exempte de composés inhibiteurs de l’étape d) d’amplification de l’ADN. L’étape c) de purification comprend de préférence une étape de clarification et une étape de précipitation. L’étape de clarification comprend de préférence une clarification sur une colonne comprenant une membrane de silice, de la solution comprenant l’ADN extrait obtenue à l’étape b). Par exemple, la solution comprenant l’ADN extrait est transférée sur une colonne comprenant une membrane de silice et l’éluat de clarification est récupéré. La solution obtenue après clarification, en particulier l’éluat de clarification, est ensuite transférée sur une nouvelle colonne comprenant une membrane de silice permettant de retenir l’ADN. La fixation de l’ADN est effectuée en ajoutant un tampon de de liaison à la solution obtenue après clarification, pour obtenir un mélange. Tout tampon de liaison de l’ADN bien connu de l’homme du métier peut être utilisé. Par exemple, le tampon de liaison comprend du chlorure de guanidinium, des sels et de l’éthanol. La colonne permettant de retenir l’ADN est ensuite lavée avec au moins un tampon de lavage. De préférence, la colonne est lavée avec un premier tampon de lavage, puis est lavée une ou deux fois avec un deuxième tampon de lavage. Le premier tampon de lavage permet d’éliminer les protéines, les métabolites et autres composés inhibiteurs. Le premier tampon de lavage comprend par exemple du chlorure de guanidinium et de l’isopropanol. Le deuxième tampon de lavage permet d’éliminer les derniers contaminants dont les traces d’isopropanol et d’assurer un séchage optimal de la membrane de silice. Le deuxième tampon de lavage comprend par exemple de l’éthanol. L’ADN est ensuite élué avec un tampon d’élution. Tout tampon d’élution de l’ADN bien connu de l’homme du métier peut être utilisé. Par exemple, le tampon d’élution comprend de l’eau et du trisaminométhane. Pour l’élution, la colonne est de préférence placée dans un récipient comprenant le tampon d’élution à chaud, par exemple à 65°C, par exemple pendant 5 minutes. Eventuellement, du tampon d’élution est à nouveau ajouté dans le récipient et le récipient est mis en incubation à chaud, par exemple à 65°C, par exemple pendant 5 minutes. L’ensemble est centrifugé pour récupérer l’éluat comprenant l’ADN purifié. Cet éluat comprenant l’ADN purifié est la solution d’ADN purifié. La solution d’ADN purifié peut éventuellement être conservée à -80°C, avant de réaliser l’étape d). Etape d) L’étape d) comprend l’amplification de l’ADN de la solution d’ADN purifié avec au moins un couple d’amorces spécifiques du microorganisme à détecter. L’étape d) permet d’obtenir une solution comprenant de l’ADN amplifié si la solution d’ADN purifié comprend de l’ADN du microorganisme à détecter. L’amplification de l’ADN peut être effectuée à partir d’un volume de la solution d’ADN purifié et, optionnellement, à partir d’un volume de la solution d’ADN purifié dilué, par exemple au 10 ème . La dilution de la solution d’ADN purifié est particulièrement avantageuse en cas de suspicion de la présence de composés inhibiteurs de l’amplification dans ladite solution d’ADN purifié. L’amplification est de préférence une PCR ou une qPCR. Si la méthode de détection concerne la détection de deux microorganismes, l’étape d) comprend l’utilisation d’au moins un couple d’amorces spécifique du premier microorganisme à détecter et d’au moins un couple d’amorces spécifique du deuxième microorganisme à détecter. Si la méthode de détection concerne la détection d’au moins deux microorganismes, l’étape d) comprend l’utilisation d’au moins un couple d’amorces spécifique de chacun des microorganismes à détecter. Il est possible d’utiliser une même amorce dans des couples d’amorces destinés à détecter des microorganismes différents. C’est notamment le cas lorsqu’une amorce d’un couple d’amorces est spécifique d’une espèce de microorganisme et l’autre amorce est spécifique du genre de ce microorganisme. Le couple d’amorces spécifique d’un microorganisme à détecter est par exemple tel que défini ci-dessus dans la section « Amorces et amplifications d’amorces ». Lorsque le microorganisme est la microalgue Ostreopsis ou la microalgue Ostreopsis cf. ovata , l’étape d) comprend de préférence l’amplification de l’ADN de la solution d’ADN purifié avec une amorce sens spécifique dudit microorganisme et un mélange d’amorces anti-sens, lesdites amorces anti-sens comprenant la séquence SEQ ID NO: 1. Lorsque le microorganisme à détecter est la microalgue Ostreopsis , l’étape d) comprend, de préférence, l’amplification de l’ADN de la solution d’ADN purifié avec une amorce sens spécifique d’ Ostreopsis et un mélange d’amorces anti-sens, lesdites amorces anti-sens comprenant la séquence SEQ ID NO: 1. Lorsque le microorganisme est la microalgue Ostreopsis cf. ovata , l’étape d) comprend, de préférence, l’amplification de l’ADN de la solution d’ADN purifié avec une amorce sens spécifique d’ Ostreopsis cf. ovata et un mélange d’amorces anti-sens, lesdites amorces anti-sens comprenant la séquence SEQ ID NO: 1. Le mélange d’amorces anti-sens est notamment tel que défini ci-dessus. L’étape d’amplification peut être mise en œuvre en utilisant un kit tel que défini ci-dessous dans la section « kit ». L’homme du métier sait déterminer les conditions appropriées pour une étape d’amplification d’ADN. A titre d’exemple, le cycle d’amplification peut comprendre : 10 minutes à 95°C pour la phase initiale de dénaturation, 40 cycles d’hybridation comprenant 95°C pendant 15 secondes, 60°C pendant 15 secondes, 72°C pendant 15 secondes, et 1 minute à 95°C pour la phase finale. Si l’amplification est une qPCR, l’acquisition de la fluorescence est par exemple effectuée toutes les 5 secondes pendant les cycles d’hybridation. Une courbe de fusion est de préférence réalisée sur une gamme de température allant de 65 à 95 °C, en particulier avec des incrément 0,5°C. Lorsque l’amplification est une qPCR, l’étape d) comprend de préférence l’amplification d’une gamme étalon d’ADN, pour la quantification. De manière avantageuse, la gamme étalon d’ADN est constituée de l’ADN d’échantillons de référence tels que définis ci-dessus dans la section « Plasmide étalon ». L’étape d) comprend ainsi de préférence l’amplification de l’ADN présent dans des échantillons de référence tels que définis ci-dessus. Dans ce cas, pour chaque microorganisme à détecter, l’ADN d’échantillons de référence comprenant des concentrations connues d’un plasmide comprenant une séquence consensus du microorganisme à détecter sont également amplifiés à l’étape d). Les échantillons de référence correspondant au microorganisme à détecter permettent d’obtenir une gamme de quantification pour ce microorganisme. Typiquement, des échantillons de référence comprenant des concentrations connues d’un plasmide comprenant une séquence consensus d’ Ostreopsis cf. siamensis sont utilisés pour établir une gamme étalon pour la quantification d’ Ostreopsis cf. siamensis . La séquence consensus d’ O streopsis cf. siamensis par exemple comprend ou consiste en la séquence SEQ ID NO: 13. De même, des échantillons de référence comprenant des concentrations connues d’un plasmide comprenant une séquence consensus d’ Ostreopsis cf. ovata sont utilisés pour établir une gamme étalon pour la quantification d’ Ostreopsis cf. ovata . La séquence consensus d’ O streopsis cf. ovata par exemple comprend ou consiste en la séquence SEQ ID NO: 14. Par ailleurs, des échantillons de référence comprenant des concentrations connues d’un plasmide comprenant une séquence consensus d’ Ostreopsis cf. siamensis (par exemple comprenant ou consistant en la séquence SEQ ID NO: 13) ou d’ Ostreopsis cf. ovata (par exemple comprenant ou consistant en la séquence SEQ ID NO: 14) peuvent être utilisés pour établir une gamme étalon pour la quantification d’ Ostreopsis . Etape e) L’étape e) comprend la détermination de la présence et/ou la quantification du microorganisme à détecter dans l’échantillon. Si de l’ADN est amplifié à l’issue de l’étape d), en utilisant un couple d’amorces spécifiques du microorganisme à détecter, alors ledit microorganisme est présent dans l’échantillon. La détection de l’ADN amplifié peut être réalisée par électrophorèse, par exemple sur gel d’agarose. La quantification peut par exemple être effectuée lorsque l’amplification à l’étape d) est une qPCR. Si aucun ADN n’est amplifié à l’issue de l’étape d), en utilisant un couple d’amorces spécifiques du microorganisme à détecter, alors ledit microorganisme n’est pas présent dans l’échantillon. Lorsque l’étape d) est une qPCR, la quantité ou concentration du microorganisme à détecter dans l’échantillon est déterminée, en particulier à partir de la gamme étalon d’ADN. Dans un mode de réalisation avantageux, la présente invention a pour objet une méthode de détection telle que défini ci-dessus d’au moins une microalgue, de préférence une microalgue du genre Ostreopsi s , une microalgue Ostreopsis cf. siamensis et/ou une microalgue Ostreopsis cf. ovata , dans au moins un échantillon, de préférence au moins un échantillon d’eau de mer, comprenant les étapes suivantes : filtration dudit échantillon, pour obtenir un rétentat comprenant des microorganismes, extraction de l’ADN des microorganismes du rétentat, pour obtenir une solution comprenant de l’ADN extrait, purification de l’ADN de la solution comprenant de l’ADN extrait, pour obtenir une solution d’ADN purifié, amplification de l’ADN de la solution d’ADN purifié avec au moins un couple d’amorces spécifiques de la microalgue à détecter, et détermination de la présence et/ou quantification de ladite microalgue dans l’échantillon. Kit La présente invention a également pour objet un kit approprié la détection d’au moins un microorganisme tel que défini ci-dessus, en particulier approprié pour la mise en œuvre d’une méthode de détection d’au moins un microorganisme telle que défini ci-dessus. Le kit tel que défini ci-dessus est de préférence approprié pour la détection d’une microalgue du genre Ostreopsis et/ou d’une microalgue Ostreopsis cf. ovata . Le kit tel que défini ci-dessus comprend de préférence au moins un couple d’amorces permettant d’amplifier l’ADN (i) de microalgues du genre Ostreopsis et/ou de microalgues de l’espèce Ostreopsis cf. ovata . De préférence, le kit tel que défini ci-dessus comprend en outre au moins un couple d’amorces permettant d’amplifier l’ADN de microalgues de l’espèce Ostr e opsis cf. siamensis . Le kit tel que défini ci-dessus comprend de préférence un mélange d’amorces anti-sens, dans lequel les amorces anti-sens comprennent la séquence SEQ ID NO: 1. Le kit tel que défini ci-dessus comprend de préférence un mélange d’amorces anti-sens, lesdites amorces comprenant les séquences SEQ ID NO: 5 à 12. Le kit tel que défini ci-dessus comprend de préférence : un mélange d’amorces anti-sens, lesdites amorces comprenant les séquences SEQ ID NO: 5 à 12, une amorce sens de séquence SEQ ID NO: 3 et/ou une amorce sens de séquence SEQ ID NO : 4, optionnellement, une amorce sens de séquence SEQ ID NO : 2, et optionnellement, une amorce anti-sens de séquence SEQ ID NO : 5. Un kit préféré tel que défini ci-dessus comprend : un mélange d’amorces anti-sens, lesdites amorces comprenant les séquences SEQ ID NO: 5 à 12, une amorce sens de séquence SEQ ID NO: 3, une amorce sens de séquence SEQ ID NO : 4, une amorce sens de séquence SEQ ID NO : 2, et une amorce anti-sens de séquence SEQ ID NO : 5. De préférence, le kit tel que défini ci-dessus comprend en outre : au moins une enzyme polymérase, des dNTPs, un tampon des ions magnésium et/ou un colorant de l’ADN ou de l’ARN. Le kit tel que défini ci-dessus peut en outre comprendre : au moins un filtre, de préférence un filtre en polycarbonate ou en nylon, au moins un tampon de lyse, au moins un tampon de liaison, au moins un tampon de précipitation, et/ou au moins un tampon d’élution. Le filtre, le tampon de lyse, le tampon de liaison, le tampon de précipitation et le tampon d’élution sont notamment tels que définis ci-dessus. Utilisation d’un mélange d’amorces ou d’un kit La présente invention a également pour objet l’utilisation d’un mélange d’amorces anti-sens tel que défini ci-dessus, pour la détection d’au moins une microalgue du genre Ostreopsis et/ou d’au moins une microalgue de l’espèce Ostreopsis cf. ovata . Le mélange d’amorces anti-sens est notamment tel que défini ci-dessus. Le mélange d’amorces anti-sens comprend de préférence les amorces anti-sens de séquences SEQ ID NO: 5 à 12. Le mélange d’amorces anti-sens est par exemple utilisé avec l’amorce sens de séquence SEQ ID NO: 4 pour détecter une microalgue du genre Ostreopsis . Le mélange d’amorces anti-sens est par exemple utilisé avec l’amorce sens de séquence SEQ ID NO: 3 pour détecter une microalgue de l’espèce Ostreopsis cf. ovata . La présente invention a également pour objet l’utilisation d’un kit tel que défini ci-dessus dans la section « kit », pour la détection d’au moins une microalgue du genre Ostreopsis et/ou d’au moins une microalgue de l’espèce Ostreopsis cf. ovata . La présente invention a également pour objet l’utilisation telle que définie ci-dessus pour la détection de (i) au moins une microalgue du genre Ostreopsis et/ou d’au moins une microalgue de l’espèce Ostreopsis cf. ovata et (ii) optionnellement, pour la détection d’au moins une microalgue de l’espèce Ostr e opsis cf. siamensis . D'autres caractéristiques et avantages de l'invention ressortiront mieux des exemples qui suivent, donnés à titre illustratif et non limitatif. Listage de séquences La séquence SEQ ID NO: 1 correspondant à la séquence des amorces anti-sens spécifiques d’ Ostreops is cf. ovata . La séquence SEQ ID NO: 2 correspond à la séquence d’une amorce sens spécifique d’ Ostreops is cf. siamensis . La séquence SEQ ID NO: 3 correspond à la séquence d’une amorce sens spécifique d’ Ostreops is cf. ovata . La séquence SEQ ID NO: 4 correspond à la séquence d’une amorce sens spécifique d’ Ostreops is . La séquence SEQ ID NO: 5 correspond à la séquence d’une amorce anti-sens spécifique d’ Ostreops is . Les séquences SEQ ID NO: 6 à SEQ ID NO: 12 correspondent à la séquence d’une amorce anti-sens spécifique d’ Ostreopsis cf. ovata . La séquence SEQ ID NO: 13 correspond à une séquence consensus de la microalgue Ostreopsis cf. siamensis . La séquence SEQ ID NO: 14 correspond à une séquence consensus de la microalgue Ostreopsis cf. ovata . Figures La décrit les protocoles d’extraction d’ADN testés sur les cultures d’ O. cf. siamensis et d’ O. cf. ovata , où le protocole A est le protocole de référence et les protocoles B, C et D en sont des variantes. La décrit les moyennes et écart-types du nombre de copies par cellule d’ O. cf. siamensis sur plusieurs niveaux de dilution extraits avec les protocoles A, B, C et D. Cette analyse renseigne sur les performances d’extraction des protocoles en fonction de la concentration cellulaire d’ O. cf. siamensis . Les trois séries analytiques sont représentées séparément pour évaluer la répétabilité des protocoles. Chaque dilution a été réalisée en triplicat (n). Ct : cycle de seuil ou «Cycle threshold ». La décrit les moyennes et écart-types du nombre de copies par cellule d’ O. cf. ovata sur plusieurs niveaux de dilution extraits avec les protocoles A, B, C et D. Cette analyse renseigne sur les performances d’extraction des protocoles en fonction de la concentration cellulaire d’ O. cf. ovata . Les quatre séries analytiques sont représentées séparément pour évaluer la répétabilité des protocoles. Chaque dilution a été réalisée en triplicat (n). Ct : cycle de seuil ou «Cycle threshold ». La décrit les moyennes et écart-types des différences entre deux niveaux de dilution extraits avec les protocoles A, B, C et D sur des cultures d’ O. cf. siamensis et d’ O. cf. ovata . Les différences de concentration sont exprimées en logarithme base 10. Le nombre de séries analytiques (n) est indiqué sur la figure. La décrit les courbes d’amplification d’une gamme d’étalon plasmide O. cf. ovata (nombre de copies) avec les couples d’amorces SEQ ID NO: 3/ SEQ ID NO: 1 et SEQ ID NO: 3/ SEQ ID NO: 5. La décrit la gamme standard pour O. cf. siamensis (n=12 runs de qPCR) Le nombre de copies par dilution est transformé par un logarithme base 10. Les paramètres de la qPCR sont représentés par l’équation de droite (y), la linéarité (R²) et l’efficacité (E). Ct : cycle de seuil ou «Cycle threshold ». RFU : Unité de fluorescence relative ou « relative fluorescence unit » . La décrit la gamme standard pour O. cf. ovata (n=11 runs de qPCR). Le nombre de copies par dilution est transformé par un logarithme base 10. Les paramètres de la qPCR sont représentés par l’équation de droite (y), la linéarité (R²) et l’efficacité (E). Ct : cycle de seuil ou «Cycle threshold ». RFU : Unité de fluorescence relative ou « relative fluorescence unit » Exemples La méthode déployée a pour objectif de détecter et de quantifier Ostreopsis spp., Ostreopsis cf. siamensis et Ostreopsis cf. ovata par qPCR à partir d’ADN extraits de cultures ou de matrices environnementales. Le protocole d’extraction d’ADN est réalisé par l’intermédiaire d’un kit commercial, le NucleoSpin Plant II Mini de chez Macherey-Nagel. Brièvement, un volume d’échantillon (de préférence 1 litre) est filtré sur une membrane de 3 µm en polycarbonate de diamètre 47 mm. La membrane est vortexée pendant 1 minute dans un tampon de lyse contenant des agents chaotropiques, des agents dénaturants et un détergent. Le lysat est ensuite broyé en présence de billes de verre d’un diamètre de 0,5 mm, en suivant 3 cycles de broyage d’une durée de 30 secondes à 5500 rpm entrecoupés d’une pause de 30 secondes, dans un broyeur Precellys Evolution. L’ADN contenu dans le lysat est clarifié sur une membrane de silice, puis fixé sur une nouvelle membrane de silice à l’aide d’un tampon de liaison. Il est ensuite purifié grâce à l’utilisation de tampons de lavage contenant des concentrations croissantes en isopropanol et éthanol. L’ADN est finalement élué dans 100 µl de tampon d’élution contenant 5 mM de trisaminométhane. Le protocole de qPCR au SybrGreen est issu de la publication de Drouet et al. (2021). Les trois couples d’amorce sur la région ITS-5.8 rDNA, conçus par Penna et al. (2007) ou selon l’invention (cf. exemple 2), ont été utilisés pour la quantification d’ Ostreopsis spp., O. cf. siamensis and O. cf. ovata . Les qPCR ont été réalisées sur la base du kit commercial Platinum® SYBR® Green qPCR SuperMix-UDG (Invitrogen) dont le mix réactionnel est composé de 0,4μM de chaque amorce, 1mM de MgCl 2 , 1X de mix SybrGreen, 2µl d’extrait d’ADN et de l’eau de grade moléculaire. Chaque run de qPCR est réalisé avec une gamme standard ( O. cf. siamensis ou O. cf. ovata , en utilisant les plasmides étalon selon l’invention dans l’exemple 3) et deux contrôles négatifs (qPCR et extraction). Les extraits d’ADN sont déposés en simplicat. Les conditions du cycle d’amplification sont les suivantes : 10 minutes à 95°C pour la phase initiale de dénaturation, suivi par 40 cycles d’hybridation (95°C pendant 15 secondes, 60°C pendant 15 secondes, 72°C pendant 15 secondes incluant la phase d’acquisition de la fluorescence) et se termine par une phase à 95°C pendant 1 minute. La courbe de fusion est réalisée sur une gamme de température allant de 65 à 95 °C (incrément 0,5°C) dont l’acquisition se fait toutes les 5 secondes. Exemple 1: Amélioration de l’étape de lyse Le protocole de référence et trois de ses variantes ont été testés pour déterminer la meilleure méthode d’extraction d’ADN pour O. cf. siamensis et O. cf. ovata . Les modalités des différents protocoles sont représentées en , le protocole A étant le protocole de référence développé par l’Ifremer et le protocole D correspondant à la méthode selon l’invention. Dans le protocole A, la membrane est placée dans le tampon de lyse sans agitation et il s’agit d’une lyse chimique et enzymatique. Dans le protocole B, la membrane est placée dans le tampon de lyse sous agitation (vortexage) et il s’agit d’une lyse chimique et enzymatique. Dans le protocole C, la membrane est placée dans le tampon de lyse sans agitation et il s’agit d’une lyse chimique et mécanique (par broyage). Le protocole D comprend à la fois de placer la membrane dans le tampon de lyse sous agitation (vortexage) pendant une minute et il s’agit d’une lyse chimique et mécanique (par broyage).Les rendements des ADN extraits sont évalués pour chaque condition expérimentale (lyse mécanique et enzymatique, avec ou sans étapes additionnelles) réalisée en triplicat sur des cultures d’ O. cf. siamensis et O. cf. ovata . Pour les protocoles A, B et C, le nombre de copies par cellule est hétérogène entre les dilutions. Une baisse de la performance d’extraction est observée avec l’augmentation de la concentration cellulaire ( , et ). Concernant le protocole D, le nombre de copies par cellule reste stable qu’importe la dilution et semble reproductible entre les différentes expérimentations menées sur les deux espèces ( et ). Ce protocole induit moins de variabilité et permet une extraction fiable des ADN ( ). Le protocole D est généralisable à l’extraction d’ADN de tout microorganisme, en particulier de toute microalgue. Exemple 2 : Amélioration de la détection d’ Ostreopsis et Ostreopsis cf. ovata en utilisant un mélange d’amorces anti-sens Les couples d’amorces utilisés pour chaque microalgue cible à détecter, leur séquence et la taille de l’amplicon obtenu sont indiqués dans le tableau 1. Nom de l’amorce Séquence des amorces et sonde (5’ – 3’) Cible Taille Amplicon Ostreopsis_F AAAACGATATGAAGAGTGCAGC (SEQ ID NO: 4) 5.8S Ostreopsis spp. 92 pb Ostreopsis_R_dO CCARGARYATGCCTACATTCAA R = G ou A ; Y = T ou C (SEQ ID NO: 1) Siamensis_F TGTTACCATTGCTGAGTTTG (SEQ ID NO: 2) ITS1-5.8S O. cf. siamensis 223 pb Ostreopsis_R CCAGGAGTATGCCTACATTCAA (SEQ ID NO: 5) Ovata_F CAATGCTCATGTCAATGATG (SEQ ID NO: 3) ITS1-5.8S O. cf. ovata 210 pb Ostreopsis_R_dO CCARGARYATGCCTACATTCAA R = G ou A ; Y = T ou C (SEQ ID NO: 1) Les couples d’amorces SEQ ID NO: 3/ SEQ ID NO: 1 et SEQ ID NO: 3/ SEQ ID NO: 5 ont été testés en simultané sur la même gamme de plasmides O . cf. ovata . Un décalage d’environ 6 Ct, soit 2 log, a été mis en évidence entre SEQ ID NO: 3/ SEQ ID NO: 1 et SEQ ID NO :3/ SEQ ID NO: 5 (cf. ). Le couple d’amorces SEQ ID NO:3/ SEQ ID NO:1 permet une détection plus globale des séquences d’ O. cf. ovata et donc une plus grande sensibilité dans la quantification. Exemple 3 : Amélioration de la quantification du microorganisme en utilisant un plasmide étalon La séquence consensus de chaque plasmide a été obtenue à partir des séquences du cluster ribosomique 18S-ITS1-5.8S extraites de la banque de données Genbank pour chacune des deux espèces. Ces séquences ont été alignées par ClustalO sur Seaview puis sélectionnées en fonction de leur longueur et de leur qualité. L’alignement pour O. cf. siamensis comporte 179 séquences et 1 482 caractères ; l’alignement pour O. cf. ovata comporte 67 séquences et 1 091 caractères. Une séquence consensus a été réalisée pour chacun des alignements et les amorces de séquence SEQ ID NO: 2, 3 et 5 ont été placées pour visualiser la région d’intérêt. Pour chaque région délimitée, les extrémités 5’ et 3’ ont été rallongées de 50 bp. Les séquences extraites sont les suivantes : la séquence consensus SEQ ID NO: 13 pour Ostreopsis cf. siamensis , et la séquence consensus SEQ ID NO: 14 pour Ostreopsis cf. ovata . Ces séquences ont été synthétisées par le service Eurofins Genomics dans un plasmide pEX-A128. La concentration initiale en copies est déterminée à partir de la quantité de plasmides synthétisés avec la formule suivante : Nombre de copies = (A × 6,022.10 23 )/(L × 10 9 ×660) dans laquelle A est la masse de plasmide en ng, L est la longueur (en bases) du plasmide comprenant la séquence consensus, 6,022.10 23 est le nombre d’Avogadro et 660 est le poids moléculaire moyen d’une paire de base. Dans notre cas, 1.2 µg de plasmide (A) ont été resuspendus dans 100µl d’eau de grade moléculaire, ce qui donne 3,95.10 11 copies/100µl (taille du plasmide : 2 450 bp ; taille du fragment : 323 bp) pour O. cf. siamensis et 3,97.10 11 copies/100µl (taille du plasmide : 2 450 bp ; taille du fragment : 311 bp) pour O. cf. ovata . Ces plasmides ont permis d’établir de nouvelles gammes étalons pour chacune des deux espèces (cf. et 7). Le premier point de chaque gamme est dilué à une concentration de 4,0.10 6 copies.µl -1 . Une série de dilutions au 10ème est ensuite réalisée pour obtenir un total de 7 points de référence allant de 4,0.10 6 à 4 copies.µl -1 . Méthode de détection d’au moins un microorganisme dans au moins un échantillon, comprenant les étapes suivantes : filtration dudit échantillon, pour obtenir un rétentat comprenant des microorganismes, extraction de l’ADN des microorganismes du rétentat, pour obtenir une solution comprenant de l’ADN extrait, purification de l’ADN de la solution comprenant l’ADN extrait, pour obtenir une solution d’ADN purifié, amplification de l’ADN de la solution d’ADN purifié avec au moins un couple d’amorces spécifique du microorganisme à détecter, et détermination de la présence et/ou quantification du microorganisme à détecter dans l’échantillon. Méthode de détection selon la revendication 1, caractérisée en ce que le microorganisme à détecter est une microalgue du genre Ostreopsis , une microalgue de l’espèce O streopsis cf. siamensis ou une microalgue de l’espèce Ostreopsis cf. ovata . Méthode de détection selon la revendication 1 ou 2, caractérisée en ce que l’étape b) d’extraction comprend une étape de lyse chimique, pour obtenir un premier lysat et, optionnellement, une étape de lyse mécanique dudit premier lysat. Méthode de détection selon la revendication 3, caractérisée en ce que l’étape de lyse chimique comprend de placer le filtre dans un récipient en présence d’une solution de lyse, de sorte que le filtre et le rétentat présent sur le filtre soient au contact de la solution de lyse, et sous agitation. Méthode de détection selon l’une des revendications 1 à 4, dans laquelle l’étape c) de purification comprend une étape de clarification et une étape de précipitation. Méthode de détection selon l’une des revendications 1 à 5, dans laquelle l’étape d) comprend l’amplification de l’ADN d’au moins deux échantillons de référence, chaque échantillon de référence comprenant une concentration connue d’un plasmide, ledit plasmide comprenant une séquence consensus du microorganisme à détecter. Méthode de détection selon l’une des revendications 1 à 6, dans laquelle ledit au moins un microorganisme à détecter est une microalgue du genre Ostreopsis et/ou une microalgue de l’espèce Ostreopsis cf. ovata et en ce que, dans l’étape d), le couple d’amorces comprend un mélange d’amorces anti-sens de séquence SEQ ID NO: 1. Mélange d’amorces anti-sens approprié pour la détection d’une microalgue du genre Ostreopsis et/ou d’une microalgue de l’espèce Ostreopsis cf. ovata , caractérisé en ce que les amorces anti-sens dudit mélange comprennent la séquence SEQ ID NO: 1. Kit approprié pour la détection d’une microalgue du genre Ostreopsis et/ou d’une microalgue de l’espèce Ostreopsis cf. ovata , ledit kit comprenant le mélange d’amorces anti-sens selon la revendication 8. Utilisation du mélange d’amorces anti-sens selon la revendication 8 ou du kit selon la revendication 9, pour la détection d’au moins une microalgue du genre Ostreopsis et/ou d’au moins une microalgue de l’espèce Ostreopsis cf. ovata . Plasmide approprié pour la quantification d’une microalgue dans un échantillon, ledit plasmide comprenant la séquence consensus SEQ ID NO: 13 ou SEQ ID NO: 14.