Brevet FR3147289A1 — publié le 20241004

TITRE : APTAMÈRE COMPOSITE ET SON UTILISATION POUR DÉTECTER UNE MOLÉCULE D’INTÉRÊT La présente invention concerne la fabrication d’un aptamère composite électroactif à partir d’une séquence nucléotidique électroactive et d’un aptamère donneur. La présente invention concerne également l’utilisation de cet aptamère composite électroactif pour détecter au moins une molécule d’intérêt et/ou pour fabriquer un aptacapteur électroactif, lequel peut également être utilisé pour détecter au moins une molécule d’intérêt. (pas de figure) APTAMÈRE COMPOSITE ET SON UTILISATION POUR DÉTECTER UNE MOLÉCULE D’INTÉRÊT DOMAINE DE L’INVENTION La présente invention concerne la fabrication d’un aptamère composite électroactif à partir d’une séquence nucléotidique électroactive et d’un aptamère donneur. La présente invention concerne également l’utilisation de cet aptamère composite électroactif pour détecter au moins une molécule d’intérêt et/ou pour fabriquer un aptacapteur électroactif, lequel peut également être utilisé pour détecter au moins une molécule d’intérêt. ART ANTERIEUR Les biocapteurs sont des outils analytiques présentant de multiples possibilités d'utilisation dans de nombreux domaines (médecine, agroalimentaire, environnement...), ils font l'objet d'efforts de recherche intenses depuis une trentaine d'année. Ces outils sont constitués de l'association d'un élément biologique sensible, également appelé biorécepteur, et d'un élément physique, appelé transducteur. Le biorécepteur permet la détection spécifique de l'analyte dans un milieu complexe. Cette étape de reconnaissance spécifique se traduit par un changement physico-chimique du milieu ou de l'interface capteur-solution. Le transducteur va permettre de transformer ce signal issu de la réaction entre l'analyte et le biorécepteur en un signal physique mesurable qui sera ensuite enregistré. Il s'agit généralement d'une électrode ou d'un système optique. Du point de vue réactionnel, deux types de biocapteurs peuvent être distingués selon la nature de la reconnaissance. Les systèmes catalytiques utilisent généralement une enzyme comme biorécepteur, alors que les dispositifs à affinité sont basés sur l'utilisation d'anticorps. Cependant, une nouvelle génération de capteurs d'affinité est apparue ces dernières années dans laquelle les anticorps sont substitués par des oligonucléotides appelés aptamères. Il s'agit de fragments monocaténaires synthétiques d'ADN ou d'ARN qui ont la propriété de reconnaître spécifiquement la ou les molécules cibles pour lesquelles ils ont été produits. Les aptamères présentent plusieurs avantages par rapport aux anticorps, notamment une plus grande stabilité chimique ainsi qu'une plus grande flexibilité en matière de modification chimique, ce qui les rend particulièrement adaptés à la technologie biocapteurs. De plus des aptamères peuvent être synthétisés pour une très grande variété de cibles, incluant des petits composés organiques ou non organiques, des peptides, des protéines, et même des cellules entières. La sélection des aptamères est réalisé suivant des procédés itératifs in vitro comme le procédé SELEX ( Systematic Evolution of Ligands by EXponential enrichment ), remplaçant ainsi avantageusement les méthodes de production in vivo des anticorps. La production d'aptamères est assez rapide, peu coûteuse, et présente une variabilité entre lots quasiment nulle. De plus, le complexe aptamère-cible peut généralement être dissocié, permettant une possible réutilisation de l’aptamère et de la cible. Bien que de nombreux aptamères aient déjà été décrits dans la littérature, le défi principal de la conception d'aptacapteurs reste le même que pour les autres capteurs d'affinité : il s'agit de pouvoir mesurer de faibles changements physico-chimiques issus de l'interaction entre le biorécepteur et la cible. Pour cela, trois stratégies peuvent être développées : la première est basée sur l'utilisation de méthodes de mesure directes comme la spectroscopie d'impédance électrochimique, la micro-gravimétrie (microbalances à quartz), ou la résonance de plasmons de surface. Cependant ces méthodes sophistiquées voient leur utilisation limitée à l'analyse de matrices simples et présentent souvent une sensibilité insuffisante. la deuxième stratégie consiste à réaliser une détection dite « par compétition » mettant en jeu un dérivé de la molécule cible marqué par une sonde facilement détectable (généralement une enzyme ou un marqueur fluorescent). Cette stratégie montre une bonne sensibilité, mais les protocoles de mesure font appel à plusieurs cycles d'incubation/lavage et impliquent des réactifs coûteux. une troisième stratégie est basée sur le marquage de l'aptamère par une sonde facilement mesurable. Lors de l'interaction de l'aptamère avec la molécule cible, le signal correspondant à cette sonde subit une modification proportionnelle à la concentration de la cible. Cette méthode, très utilisée pour le développement d'aptacapteurs, permet une détection directe de l'analyte. Cependant elle exige le marquage préalable des aptamères et n'est pas applicable à tous les analytes. BREF APERÇU Pour surmonter l’ensemble de ces problématiques, les inventeurs ont mis au point une stratégie de mesure électrochimique unique basée sur l'intégration d'un fragment d’un aptamère donneur dans une séquence nucléotidique électroactive, permettant la réalisation d’aptacapteurs électrochimiques non seulement sensibles et fiables mais aussi simples d'utilisation. Cet outil étant par ailleurs applicable à de nombreuses cibles, il montre un fort potentiel d'exploitation. Compte tenu de ce qui précède, un premier but de l’invention est d’utiliser une séquence nucléotidique électroactive pour la fabrication d’un aptamère composite électroactif capable de cibler spécifiquement au moins une molécule d’intérêt. Un deuxième but de l’invention est de proposer cet aptamère composite électroactif soit pour son utilisation pour la détection d’au moins une molécule d’intérêt, soit pour la fabrication d’un aptacapteur électroactif pouvant lui aussi être utilisé pour détecter au moins une molécule d’intérêt. Un troisième but de l’invention est de mettre à disposition des procédés de fabrication de l’aptamère composite électroactif et de l’aptacapteur électroactif. Un autre but de l’invention est de proposer une banque de séquences nucléotidiques électroactives lesquelles servent à la fabrication de l’aptamère composite électroactif. DESCRIPTION DETAILLEE En préambule, l’invention se rapporte aux objets tels qu’ils sont définis ci-après et sauf indication contraire ou si le contexte s’y oppose, tous les termes ont leur sens ordinaire dans le(s) domaine(s) concerné(s). De manière générale, un premier objet de l’invention concerne l’utilisation d’une séquence nucléotidique électroactive comprenant un anneau central électroactif (1) et cinq tiges-boucles (2) pour la fabrication d’un aptamère composite électroactif comprenant secondaire comprenant un anneau central électroactif (1’) et au moins cinq tiges-boucles (2’, 3’) capable de cibler spécifiquement au moins une molécule d’intérêt, dans laquelle ladite séquence nucléotidique électroactive est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 582 et 606, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 609 et 633, et dans laquelle ledit aptamère composite électroactif comprend ladite séquence nucléotidique électroactive dans laquelle a été introduit par addition ou substitution au moins un fragment d’au moins un aptamère donneur, ledit fragment étant capable de fixer spécifiquement une molécule d’intérêt, l’électroactivité de l’anneau central électroactif (1’) dudit aptamère composite électroactif étant préservée par rapport à celle de l’anneau central électroactif (1) de ladite séquence nucléotidique électroactive, et la capacité de fixer spécifiquement ladite molécule d’intérêt dudit au moins un fragment dudit aptamère composite électroactif étant préservée par rapport à celle dudit au moins un fragment d’au moins un aptamère donneur. Par « électroactif », « électroactive » et « électroactivité », il est fait référence au fait que l’aptamère immobilisé sur une électrode donne spontanément un courant électrique mesurable lorsqu’on le soumet à un potentiel d’oxydation, dépendant du matériau d’électrode utilisé. Par « séquence nucléotidique », on entend une séquence d’ADN monobrin constituée des quatre nucléotides adénosine (A), thymidine (T), guanosine (G) et cytidine (C). Elle est qualifiée d’« électroactive » parce qu’elle possède une activité électrochimique intrinsèque qu’il est possible d’exploiter aux fins de l’invention. Dans l’invention, celle-ci est choisie dans une banque de séquences nucléotidiques électroactives particulières ( cf. infra ) et elle se distingue par une structure secondaire comprenant cinq tiges-boucles organisées autour d’un anneau central électroactif dont l’activité électrochimique intrinsèque peut se mesurer au moyen des méthodes de mesures électrochimiques telle que la voltammétrie cyclique, la voltammétrie à impulsions différentielles ou d’autres (Alawad et al ., A reagentless aptasensor based on intrinsic aptamer redox activity for the detection of tetracycline in water , Sensors and Actuators B: Chemical, Volume 288, 2019, Pages 141-146 ; Alawad et al ., SECM for Studying the Immobilization and Repartition of a Redox Anti-tetracycline Aptamer on Screen-printed Carbon Electrodes , Electroanalysis 2021, 33, 292.) . Parmi les séquences nucléotidiques électroactives de cette banque, la séquence SEQ ID NO : 1 peut être considérée comme celle de référence puisque c’est à partir de celle-ci que les inventeurs ont mis en évidence l’activité électrochimique intrinsèque de l’anneau central, qu’ils ont construit la banque de séquences nucléotidiques électroactives et qu’ils ont décidé de l’exploiter astucieusement pour fabriquer à foison des aptamères composites électroactifs inédits. En particulier, les inventeurs ont démontré que cette séquence nucléotidique électroactive de séquence SEQ ID NO : 1, une fois immobilisée à la surface d’une électrode (de carbone ou d’or) possède un pic anodique entre 0,1 V et 0,2 V dans un test de voltammétrie cyclique où sont réalisés 2 cycles de voltammétrie cyclique entre -0,4 V et +0,6 V vs. Ag/AgCl à une vitesse de 50 mV/sec à l’aide notamment d’une station électrochimique de type Autolab PGSTAT100 potentiostat/galvanostat (EcoChimie, Netherlands). Aussi et dans ces mêmes conditions, il convient de noter que l’ensemble des séquences nucléotidiques électroactives de la banque de l’invention a cette signature électroactive. Par « pic anodique entre 0,1 V et 0,2 V », on entend le signal obtenu par oxydation de l’aptamère immobilisé à la surface de l’électrode. Le potentiel auquel ce pic est observé varie entre 0,1 et 0,2V vs Ag/AgCl en fonction de l’aptamère et du type d’électrode utilisé ( ). Par « anneau central », on entend la forme circulaire de la partie de la structure secondaire qui résulte de l’organisation des cinq tiges-boules ( cf. ). Il est qualifié d’« électroactif » parce qu’il possède une activité électrochimique intrinsèque qu’il est possible d’exploiter aux fins de l’invention. Sur ce point il convient de noter que la structure de cet anneau central électroactif comprend au moins 14, de préférence au moins 15, nucléotides libres, i.e. au moins 14, de préférence au moins 15, nucléotides qui ne sont ni engagés dans un appariement, ni n’appartiennent aux cinq tiges-boucles. Il convient également de noter que l’anneau central électroactif (1’) de l’aptamère composite électroactif de l’invention est construit sur la base de ( a pour origine ) l’anneau central électroactif (1) de la séquence nucléotidique électroactive de l’invention qui a été utilisée pour fabriquer ledit aptamère composite électroactif de l’invention. A cet égard, l’anneau central électroactif (1’) de l’aptamère composite électroactif de l’invention comprend de la même manière au moins 14, de préférence au moins 15, nucléotides libres, i.e. au moins 14, de préférence au moins 15, nucléotides qui ne sont ni engagés dans un appariement, ni n’appartiennent aux cinq tiges-boucles. Par « au moins 14 nucléotides libres », on entend que cet anneau central électroactif (1, 1’) peut en comprendre davantage ( e.g. 15, 16, 17, 18, etc. ). Ceci est notamment possible si, pour conserver la structure secondaire de l’aptamère composite électroactif de l’invention et son électroactivité intrinsèque, la structure secondaire (modélisée) impose de modifier (par addition ou suppression) le nombre des nucléotides libres pour supprimer un ou des appariements AT, TA, CG et/ou GC non désirés, correctement introduire le fragment d’un aptamère donneur et disposer d’un anneau central électroactif (1’) disposant d’une activité électrochimique intrinsèque. Par « séquence miroir », on entend une séquence nucléotidique électroactive construite en miroir d’une séquence nucléotidique électroactive de référence. C’est-à-dire que l’extrémité 5’ de l’une devient l’extrémité 3’ de l’autre et l’extrémité 3’ de l’une devient l’extrémité 5’ de l’autre, l’enchaînement des nucléotides étant conservé avec une symétrie en miroir. A titre d’exemple, la séquence SEQ ID NO : 125 est représentée par la séquence : 5’-CGTTCAAATTTTTTTGTTTGAAATTTTTTTCTTGAAATTTTTTTCTTGAAATTTTTTTCTTTTCAAATTTTTTTG-3’ et sa séquence miroir SEQ ID NO : 156 est représentée par la séquence : 5’-GTTTTTTTAAACTTTTCTTTTTTTAAAGTTCTTTTTTTAAAGTTCTTTTTTTAAAGTTTGTTTTTTTAAACTTGC-3’. A noter que s’il est possible de modifier le nombre de nucléotides au moment d’introduire au moins un fragment d’au moins un aptamère donneur sur une séquence nucléotidique électroactive ( cf. supra ), il est également possible de remplacer/substituer un ou plusieurs nucléotides pour conserver la structure secondaire de la séquence nucléotidique électroactive et son électroactivité intrinsèque, et/ou de l’aptamère composite électroactif de l’invention et son électroactivité intrinsèque. On parle alors de miroir corrigé, de séquence miroir corrigée ou de motif miroir corrigé. Cette modification est notamment réalisée pour supprimer un ou des appariements AT, TA, CG et/ou GC non désirés. A titre d’exemple, la séquence SEQ ID NO : 1 de référence est représentée par la séquence : 5’- CGTACAAATTTTTTTGCTAGAAATTTTTTTCAGGAAATTTTTTTCTTGAAATTTTTTTC A CTGCAAATTTTTTTG -3’ et sa séquence miroir corrigée SEQ ID NO : 32 est représentée par la séquence : 5’- GTTTTTTTAAACGTC T CTTTTTTTAAAGTTCTTTTTTTAAAGGACTTTTTTTAAAGATCGTTTTTTTAAACATGC -3’, où le motif A CTG avant la dernière tige-boucle de la séquence de référence SEQ ID NO :1 est devenu le motif miroir corrigé GTC T après la première tige-boucle de sa séquence miroir corrigée SEQ ID NO : 32. Par « aptamère », on entend un fragment monocaténaire synthétiques d'ADN ou d'ARN qui a la propriété de reconnaître spécifiquement la ou les molécules cibles pour lesquelles il a été produit. il est qualifié de « donneur » dans l’invention, parce que les inventeurs ont su tirer profit de la région responsable de l’affinité de l’aptamère pour sa ou ses cibles pour fabriquer les aptamères composites électroactifs de l’invention. Tout comme les séquences nucléotidiques électroactives de l’invention, cette région, également désignée par l’expression « fragment d’au moins un aptamère donneur », possède une structure secondaire. Celle-ci comprend une tige-boucle (ou épingle à cheveux), laquelle comme mentionné ci-dessus, a la capacité de fixer (de cibler) spécifiquement au moins une molécule d’intérêt, ce qui peut se mesurer au moyen des méthodes de mesures électrochimiques telle que la voltammétrie cyclique, la voltammétrie à impulsions différentielles ou d’autres ( e.g. par résonance plasmonique de surface) (Dziąbowska, Karolina, et al . ‘Application of Electrochemical Methods in Biosensing Technologies’. Biosensing Technologies for the Detection of Pathogens - A Prospective Way for Rapid Analysis, InTech, Mar. 2018). Parmi les aptamères donneurs, il est possible d’exploiter ceux décrits dans l’art antérieur mais également de procéder à une sélection in vitro en utilisant par exemple la méthode SELEX ( Systematic Evolution of Ligands by EXponential enrichment ) (Tuerk & Gold, Systematic Evolution of Ligands by Exponential Enrichment: RNA Ligands to Bacteriophage T4 DNA Polymerase , Science, 3 Aug 1990, Vol 249, Issue 4968, pp. 505-510 ; Ellington, A., Szostak, J. In vitro selection of RNA molecules that bind specific ligands . Nature 346, 818–822 (1990)) et d’exploiter les résultats de cette sélection. A noter qu’aux fins de l’invention il est souhaitable que la structure de l’aptamère donneur soit constituée de une à trois tiges-boucles associées séparées par 2 à 4 nucléotides. Des variations dans la longueur de la tige ou la taille de la boucle, ainsi que la présence de structures plus élaborées ( e.g la présence de tiges-boucles secondaires sur les tiges-boucles principales) n’écartent toutefois pas la possibilité de réaliser l’invention. Dans le cas de structures complexes, il est alors parfois important de réaliser des études de troncage de l’aptamère donneur afin de déterminer la partie impliquée dans la reconnaissance de la molécule d’intérêt, qui fera l’objet du greffage. Par « aptamère composite électroactif », on entend l’aptamère synthétique résultant de l’intégration (du greffage), par addition ou substitution, d’au moins un fragment d’au moins un aptamère donneur dans une séquence nucléotidique électroactive de l’invention. S’il est qualifié de « composite », c’est donc parce qu’il est construit à partir de deux éléments distincts à savoir : une séquence nucléotidique électroactive de l’invention et au moins un fragment d’au moins un aptamère donneur. Et s’il est qualifié d’« électroactif », c’est parce sa structure secondaire conserve au moins cinq tiges-boucles organisées autour d’un anneau central électroactif dont l’activité électrochimique intrinsèque peut se mesurer au moyen des méthodes de mesures électrochimiques telle que la voltammétrie cyclique, la voltammétrie à impulsions différentielles ou d’autres. En effet, les inventeurs ont démontré que l’addition d’une tige-boucle ( i.e. celle dudit au moins un fragment d’au moins un aptamère donneur) ou le remplacement d’au moins une des tiges-boucles d’une séquence nucléotidique électroactive de l’invention par celle dudit au moins un fragment d’au moins un aptamère donneur n’affecte pas l’activité électrochimique intrinsèque de l’oligonucléotide obtenu ( i.e. l’aptamère composite électroactif de l’invention), à condition que la structure secondaire de ce dernier donne la même forme d’au moins cinq tiges-boucles et un anneau central électroactif à simple brin sur laquelle toutes les tiges-boucles s’associent. De même, les inventeurs ont démontré que l’isolement du fragment d’un aptamère donneur responsable de la fixation spécifique d’une molécule d’intérêt et son introduction dans une séquence nucléotidique électroactive de l’invention n’affecte pas sa capacité à fixer spécifiquement la molécule d’intérêt pour laquelle il a une affinité. Par « l’électroactivité de l’anneau central électroactif (1’) dudit aptamère composite électroactif étant préservée par rapport à celle de l’anneau central électroactif (1) de ladite séquence nucléotidique électroactive », on entend donc, par exemple, qu’une fois immobilisée à la surface d’une électrode (de carbone ou d’or) l’aptamère composite électroactif de l’invention possède un pic anodique entre 0,1 V et 0,2 V dans un test de voltammétrie cyclique où sont réalisés 2 cycles de voltammétrie cyclique entre -0,4 V et +0,6 V vs. Ag/AgCl à une vitesse de 50 mV/sec à l’aide notamment d’une station électrochimique de type Autolab PGSTAT100 potentiostat/galvanostat (EcoChimie, Netherlands) comme les séquences nucléotidiques électroactives de l’invention. Par « la capacité de fixer spécifiquement ladite molécule d’intérêt dudit au moins un fragment dudit aptamère composite électroactif étant préservée par rapport à celle dudit au moins un fragment d’au moins un aptamère donneur », on entend par conséquent que l’aptamère composite électroactif de l’invention est capable, via le fragment de l’aptamère donneur qui lui a été greffé, de fixer spécifiquement la molécule qu’est capable de fixer l’aptamère donneur dont est issu ledit fragment, ce qui peut se mesurer au moyen des méthodes de mesures électrochimiques telle que la voltammétrie cyclique, la voltammétrie à impulsions différentielles ou d’autres ( e.g. par résonance plasmonique de surface). Sur ce point, il convient de noter que lorsque l’aptamère composite électroactif a fixé sa cible, son signal d’électroactivité diminue. Aussi, plus l’aptacapteur électroactif de l’invention incorporant au moins un aptamère composite électroactif fixe de molécules cibles, plus le signal d’électroactivité mesuré diminue jusqu’à saturation de l’aptacapteur électroactif de l’invention. A l’aide de courbe de calibration, il est donc possible d’user de cette mesure pour quantifier la concentration d’une molécule d’intérêt dans un échantillon. De manière intéressante, il convient de noter que l’implémentation d’une même méthode de mesure électrochimique permet à la fois de démontrer et d’exploiter l’électroactivité de l’aptamère composite électroactif de l’invention, et de vérifier et d’exploiter sa capacité à fixer au moins une molécule d’intérêt. Au vu de ce qui précède, on comprend donc comment l’invention tire profit d’une part de l’électroactivité des séquences nucléotidiques électroactives de l’invention et d’autre part, de la capacité à fixer une molécule d’intérêt d’un aptamère donneur, pour proposer une plateforme universelle et modulable pour la fabrication à foison d’aptamères composites électroactifs faciles à mettre en œuvre. En effet, avec l’aptamère composite électroactif de l’invention, il est possible de déterminer rapidement et facilement, à l’aide d’une mesure électrochimique ( e.g. voltammétrie cyclique, voltammétrie à impulsions différentielles ou autres), la présence (ou l’absence) d’une molécule d’intérêt dans un échantillon et ce, en exploitant l’électroactivité provenant d’une séquence nucléotidiques électroactive de l’invention et la capacité de fixation de cette molécule d’intérêt par le fragment d’un aptamère donneur introduit dans cette séquence nucléotidique électroactive. Par ailleurs, s’il est question d’introduire par addition ou substitution « au moins un fragment d’au moins un aptamère donneur », c’est parce que les inventeurs ont mis au point des aptamères composites électroactifs comprenant au moins 2, au moins 3, voire au moins 4 fragments d’au moins un aptamère donneur. L’aptamère composite électroactif de l’invention peut donc être monofonctionnel ou multifonctionnel (bifonctionnel, trifonctionnel, tétrafonctionnel ou pentafonctionnel). Dans le cas d’un aptamère composite électroactif monofonctionnel, celui comprend l’intégration d’une fois ou de plusieurs fois d’un même fragment issu d’un même aptamère donneur sur une séquence nucléotidique électroactive de l’invention. Cet aptamère composite électroactif monofonctionnel est alors capable de ne reconnaître et de ne fixer spécifiquement qu’une seule molécule d’intérêt, qui est celle pour laquelle le(s) fragment(s) intégrés ont une affinité. Aux fins d’illustration, il est par exemple possible d’avoir un aptamère composite électroactif comprenant 2 fragments identiques issu d’un même aptamère donneur capable de fixer la troponine. Cet aptamère composite électroactif est donc monofonctionnel puisqu’il n’a d’affinité que pour la troponine. Dans le cas d’un aptamère composite électroactif multifonctionnel, celui comprend l’intégration d’au moins deux fragments différents issus d’aptamère donneur différents sur une séquence nucléotidique électroactive de l’invention. Cet aptamère composite électroactif multifonctionnel est alors capable de reconnaître et de fixer spécifiquement plusieurs molécules d’intérêt, qui sont celles fixées spécifiquement par chaque fragment intégré. Aux fins d’illustration, il est par exemple possible d’avoir un aptamère composite électroactif comprenant 2 fragments issu d’aptamères donneurs différents, l’un capable de fixer la métronidazole et l’autre capable de fixer la tétracycline. Cet aptamère composite électroactif est donc bi-fonctionnel puisqu’il possède une affinité pour la métronidazole et pour la tétracycline. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne l’utilisation ci-dessus d’une séquence nucléotidique électroactive pour la fabrication d’un aptamère composite électroactif capable de cibler spécifiquement au moins une molécule d’intérêt, dans laquelle ladite séquence nucléotidique électroactive : possède une structure secondaire comprenant un anneau central électroactif (1) et cinq tiges-boucles (2), l’électroactivité de l’anneau central électroactif (1) pouvant être déterminée au moyen des méthodes de mesures électrochimiques telle que la voltammétrie cyclique ou la voltammétrie à impulsions différentielles ; et est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 582 et 606, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 609 et 633, ladite séquence SEQ ID NO : 582 étant représentée par la séquence : HDWWS a N 10-100 S b HWWS c N 10-100 S d WDS e N 10-100 S f WWS g N 10-100 S h WHWDS i N 10-100 S j et sa séquence miroir SEQ ID NO : 609 étant représentée par la séquence : S j N 10-100 S i DWHWS h N 10-100 S g WWS f N 10-100 S e DWS d N 10-100 S c WWHS b N 10-100 S a WWDH, dans lesquelles : H représente les nucléotides A ou C ou T ; D représente les nucléotides A ou G ou T ; W représente les nucléotides A ou T ; S représente les nucléotides C ou G ; N représente les nucléotides A ou C ou G ou T ; et les motifs S a N 10-100 S b , S c N 10-100 S d , S e N 10-100 S f , S g N 10-100 S h , S i N 10-100 S j , S j N 10-100 S i , S h N 10-100 S g , S f N 10-100 S e , S d N 10-100 S c et S b N 10-100 S a représentent un motif tige-boucle comprenant de 10 à 100 nucléotides N où lorsque : S a = C alors S b = G ; S a = G alors S b = C ; S c = C alors S d = G ; S c = G alors S d = C ; S e = C alors S f = G ; S e = G alors S f = C ; S g = C alors S h = G ; S g = G alors S h = C ; S i = C alors S j = G ; et S i = G alors S j = C, et ladite séquence SEQ ID NO : 606 étant représentée par la séquence : CGTAW a N 10-100 W b CTAW c N 10-100 W d AGW e N 10-100 W f TTW g N 10-100 W h ACTGW i N 10-100 W j et sa séquence miroir SEQ ID NO : 633 étant représentée par la séquence : W j N 10-100 W i GTCAW h N 10-100 W g TTW f N 10-100 W e GAW d N 10-100 W c ATCW b N 10-100 W a ATGC dans lesquelles : W représente les nucléotides A ou T ; N représente les nucléotides A ou C ou G ou T ; et les motifs W a N 10-100 W b , W c N 10-100 W d , W e N 10-100 W f , W g N 10-100 W h , W i N 10-100 W j , W j N 10-100 W i , W h N 10-100 W g , W f N 10-100 W e , W d N 10-100 W c et W b N 10-100 W a représentent un motif tige-boucle comprenant de 10 à 100 nucléotides N où lorsque : W a = A alors W b = T ; W a = T alors W b = A ; W c = A alors W d = T ; W c = T alors W d = A ; W e = A alors W f = T ; W e = T alors W f = A ; W g = A alors W h = T ; W g = T alors W h = A ; W i = A alors W j = T ; et W i = T alors W j = A, et dans laquelle ledit aptamère composite électroactif : comprend ladite séquence nucléotidique électroactive dans laquelle a été introduit par addition ou substitution au moins un fragment d’au moins un aptamère donneur, la structure secondaire dudit au moins un fragment comprenant une tige-boucle (3) capable de fixer spécifiquement une molécule d’intérêt, la fixation de ladite molécule d’intérêt sur ledit au moins un fragment pouvant être déterminée au moyen des méthodes de mesures électrochimiques telle que la voltammétrie cyclique ou la voltammétrie à impulsions différentielles ; et possède une structure secondaire comprenant un anneau central électroactif (1’) et au moins cinq tiges-boucles (2’, 3’), l’électroactivité de l’anneau central électroactif (1’) dudit aptamère composite électroactif étant préservée par rapport à celle de l’anneau central électroactif (1) de ladite séquence nucléotidique électroactive, ladite électroactivité pouvant être déterminée au moyen des méthodes de mesures électrochimiques telle que la voltammétrie cyclique ou la voltammétrie à impulsions différentielles ; et la capacité de fixer spécifiquement ladite molécule d’intérêt dudit au moins un fragment dudit aptamère composite électroactif étant préservée par rapport à celle dudit au moins un fragment d’au moins un aptamère donneur, ladite fixation pouvant être déterminée au moyen des méthodes de mesures électrochimiques telle que la voltammétrie cyclique ou la voltammétrie à impulsions différentielles. A toutes fins utiles, il est précisé que la séquence SEQ ID NO : 582 correspond à la séquence consensus obtenue à partir des séquences SEQ ID NOs : 1, 63, 125, 149, 187, 249, 311, 435 et 497, sachant que : la base des tiges-boucles sont interchangeables sans affecter l’électroactivité de l’aptamère composite électroactif de l’invention ; et les motifs tige-boucle (ou structure en épingle à cheveux) peuvent comprendre de 10 à 100 nucléotides avec la condition qu’une fois replié une tige-boucle soit formée, i.e . qu’à partir de de séquences répétées inversées de bases complémentaires, un appariement se forme de sorte qu’apparaisse localement une structure en double hélice. De même : la séquence miroir (de la séquence SEQ ID NO : 582) SEQ ID NO : 609 correspond à la séquence consensus obtenue à partir des séquences SEQ ID NOs : 32, 94, 156, 218, 280, 342, 466 et 528 ; et la séquence SEQ ID NO : 606 correspond à la séquence consensus obtenue à partir de la séquence SEQ ID NO : 373, et sa séquence miroir SEQ ID NO : 633 correspond à la séquence consensus obtenue à partir de la séquence SEQ ID NO : 404, sachant que : la base des tiges-boucles sont interchangeables sans affecter l’électroactivité de l’aptamère composite électroactif de l’invention ; et les motifs tige-boucle (ou structure en épingle à cheveux) peuvent comprendre de 10 à 100 nucléotides avec la condition qu’une fois replié une tige-boucle soit formée, i.e . qu’à partir de de séquences répétées inversées de bases complémentaires, un appariement se forme de sorte qu’apparaisse localement une structure en double hélice. Par « de 10 à 100 nucléotides », on entend également que ledit motif tige-boucle ci-dessus comprend de 10 à 90 nucléotides, de 10 à 80 nucléotides, de 10 à 70 nucléotides, de 10 à 60 nucléotides, de 10 à 50 nucléotides, de 10 à 40 nucléotides, de 10 à 30 nucléotides ou de 10 à 20 nucléotides. Par « de 10 à 100 nucléotides », on entend aussi que ledit motif tige-boucle ci-dessus comprend 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31, 32, 33, 34, 35, 36, 37, 38, 39, 40, 41, 42, 43, 44, 45, 46, 47, 48, 49, 50, 51, 52, 53, 54, 55, 56, 57, 58, 59, 60, 61, 62, 63, 64, 65, 66, 67, 68, 69, 70, 71, 72, 73, 74, 75, 76, 77, 78, 79, 80, 81, 82, 83, 84, 85, 86, 87, 88, 89, 90, 91, 92, 93, 94, 95, 96, 97, 98, 99 ou 100 nucléotides. A cet égard, il convient de noter que ces définitions s’appliquent à tous les modes de réalisation de l’invention. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne l’utilisation d’une séquence nucléotidique électroactive ci-dessus, dans laquelle ladite séquence nucléotidique électroactive est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 583, 584 et 585, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 610, 611 et 612, ladite séquence SEQ ID NO : 583 étant représentée par la séquence : YKTWS a N 10-100 S b YTWS c N 10-100 S d WKS e N 10-100 S f TTS g N 10-100 S h WYTKS i N 10-100 S j et sa séquence miroir SEQ ID NO : 610 étant représentée par la séquence : S j N 10-100 S i KTYWS h N 10-100 S g TTS f N 10-100 S e KWS d N 10-100 S c WTYS b N 10-100 S a WTKY, dans lesquelles : Y représente les nucléotides C ou T ; K représente les nucléotides G ou T ; W représente les nucléotides A ou T ; S représente les nucléotides C ou G ; N représente les nucléotides A ou C ou G ou T ; et les motifs S a N 10-100 S b , S c N 10-100 S d , S e N 10-100 S f , S g N 10-100 S h , S i N 10-100 S j , S j N 10-100 S i , S h N 10-100 S g , S f N 10-100 S e , S d N 10-100 S c et S b N 10-100 S a représentent un motif tige-boucle comprenant de 10 à 100 nucléotides N où lorsque : S a = C alors S b = G ; S a = G alors S b = C ; S c = C alors S d = G ; S c = G alors S d = C ; S e = C alors S f = G ; S e = G alors S f = C ; S g = C alors S h = G ; S g = G alors S h = C ; S i = C alors S j = G ; et S i = G alors S j = C, ladite séquence SEQ ID NO : 584 étant représentée par la séquence : TTTTS a N 10-100 S b TTTS c N 10-100 S d TTS e N 10-100 S f TTS g N 10-100 S h TTTTS i N 10-100 S j et sa séquence miroir SEQ ID NO : 611 étant représentée par la séquence : S j N 10-100 S i TTTTS h N 10-100 S g TTS f N 10-100 S e TTS d N 10-100 S c TTTS b N 10-100 S a TTTT, dans lesquelles : S représente les nucléotides C ou G ; N représente les nucléotides A ou C ou G ou T ; et les motifs S a N 10-100 S b , S c N 10-100 S d , S e N 10-100 S f , S g N 10-100 S h , S i N 10-100 S j , S j N 10-100 S i , S h N 10-100 S g , S f N 10-100 S e , S d N 10-100 S c et S b N 10-100 S a représentent un motif tige-boucle comprenant de 10 à 100 nucléotides N où lorsque : S a = C alors S b = G ; S a = G alors S b = C ; S c = C alors S d = G ; S c = G alors S d = C ; S e = C alors S f = G ; S e = G alors S f = C ; S g = C alors S h = G ; S g = G alors S h = C ; S i = C alors S j = G ; et S i = G alors S j = C, et ladite séquence SEQ ID NO : 585 étant représentée par la séquence : AAAAS a N 10-100 S b AAAS c N 10-100 S d AAS e N 10-100 S f AAS g N 10-100 S h AAAAS i N 10-100 S j et sa séquence miroir SEQ ID NO : 612 étant représentée par la séquence : S j N 10-100 S i AAAAS h N 10-100 S g AAS f N 10-100 S e AAS d N 10-100 S c AAAS b N 10-100 S a AAAA, dans lesquelles : S représente les nucléotides C ou G ; N représente les nucléotides A ou C ou G ou T ; et les motifs S a N 10-100 S b , S c N 10-100 S d , S e N 10-100 S f , S g N 10-100 S h , S i N 10-100 S j , S j N 10-100 S i , S h N 10-100 S g , S f N 10-100 S e , S d N 10-100 S c et S b N 10-100 S a représentent un motif tige-boucle comprenant de 10 à 100 nucléotides N où lorsque : S a = C alors S b = G ; S a = G alors S b = C ; S c = C alors S d = G ; S c = G alors S d = C ; S e = C alors S f = G ; S e = G alors S f = C ; S g = C alors S h = G ; S g = G alors S h = C ; S i = C alors S j = G ; et S i = G alors S j = C. A toutes fins utiles, il est précisé que la séquence SEQ ID NO : 583 correspond à la séquence consensus obtenue à partir des séquences SEQ ID NOs : 1, 63, 149, 187 et 249, sachant que : la base des tiges-boucles sont interchangeables sans affecter l’électroactivité de l’aptamère composite électroactif de l’invention ; et les motifs tige-boucle (ou structure en épingle à cheveux) peuvent comprendre de 10 à 100 nucléotides avec la condition qu’une fois replié une tige-boucle soit formée, i.e . qu’à partir de de séquences répétées inversées de bases complémentaires, un appariement se forme de sorte qu’apparaisse localement une structure en double hélice. De même : la séquence miroir (de la séquence SEQ ID NO : 583) SEQ ID NO : 610 correspond à la séquence consensus obtenue à partir des séquences SEQ ID NOs : 32, 94, 218 et 280 ; la séquence SEQ ID NO : 584 correspond à la séquence consensus obtenue à partir des séquences SEQ ID NOs : 311 et 497, et sa séquence miroir SEQ ID NO : 611 correspond à la séquence consensus obtenue à partir des séquences SEQ ID NOs : 342 et 528 ; et la séquence SEQ ID NO : 585 correspond à la séquence consensus obtenue à partir de la séquence SEQ ID NO : 435 , et sa séquence miroir SEQ ID NO : 612 correspond à la séquence consensus obtenue à partir de la séquence SEQ ID NO : 466, sachant que : la base des tiges-boucles sont interchangeables sans affecter l’électroactivité de l’aptamère composite électroactif de l’invention ; et les motifs tige-boucle (ou structure en épingle à cheveux) peuvent comprendre de 10 à 100 nucléotides avec la condition qu’une fois replié une tige-boucle soit formée, i.e . qu’à partir de de séquences répétées inversées de bases complémentaires, un appariement se forme de sorte qu’apparaisse localement une structure en double hélice. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne l’utilisation d’une séquence nucléotidique électroactive ci-dessus, dans laquelle ladite séquence nucléotidique électroactive est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 586, 587, 588 et 589, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 613, 614, 615 et 616, ladite séquence SEQ ID NO : 586 étant représentée par la séquence : CGTAS a N 10-100 S b CTAS c N 10-100 S d AGS e N 10-100 S f TTS g N 10-100 S h ACTGS i N 10-100 S j et sa séquence miroir corrigée SEQ ID NO : 613 étant représentée par la séquence : S j N 10-100 S i GTCTS h N 10-100 S g TTS f N 10-100 S e GAS d N 10-100 S c ATCS b N 10-100 S a ATGC, dans lesquelles : S représente les nucléotides C ou G ; N représente les nucléotides A ou C ou G ou T ; et les motifs S a N 10-100 S b , S c N 10-100 S d , S e N 10-100 S f , S g N 10-100 S h , S i N 10-100 S j , S j N 10-100 S i , S h N 10-100 S g , S f N 10-100 S e , S d N 10-100 S c et S b N 10-100 S a représentent un motif tige-boucle comprenant de 10 à 100 nucléotides N où lorsque : S a = C alors S b = G ; S a = G alors S b = C ; S c = C alors S d = G ; S c = G alors S d = C ; S e = C alors S f = G ; S e = G alors S f = C ; S g = C alors S h = G ; S g = G alors S h = C ; S i = C alors S j = G ; et S i = G alors S j = C, ladite séquence SEQ ID NO : 587 étant représentée par la séquence : CGTTS a N 10-100 S b TTTS c N 10-100 S d AGS e N 10-100 S f TTS g N 10-100 S h ACTGS i N 10-100 S j et sa séquence miroir corrigée SEQ ID NO : 614 étant représentée par la séquence : S j N 10-100 S i GTCTS h N 10-100 S g TTS f N 10-100 S e GAS d N 10-100 S c TTTS b N 10-100 S a TTGC, dans lesquelles : S représente les nucléotides C ou G ; N représente les nucléotides A ou C ou G ou T ; et les motifs S a N 10-100 S b , S c N 10-100 S d , S e N 10-100 S f , S g N 10-100 S h , S i N 10-100 S j , S j N 10-100 S i , S h N 10-100 S g , S f N 10-100 S e , S d N 10-100 S c et S b N 10-100 S a représentent un motif tige-boucle comprenant de 10 à 100 nucléotides N où lorsque : S a = C alors S b = G ; S a = G alors S b = C ; S c = C alors S d = G ; S c = G alors S d = C ; S e = C alors S f = G ; S e = G alors S f = C ; S g = C alors S h = G ; S g = G alors S h = C ; S i = C alors S j = G ; et S i = G alors S j = C, ladite séquence SEQ ID NO : 588 étant représentée par la séquence : CGTTS a N 10-100 S b TTTS c N 10-100 S d TTS e N 10-100 S f TTS g N 10-100 S h TTTTS i N 10-100 S j et sa séquence miroir SEQ ID NO : 615 étant représentée par la séquence : S j N 10-100 S i TTTTS h N 10-100 S g TTS f N 10-100 S e TTS d N 10-100 S c TTTS b N 10-100 S a TTGC, dans lesquelles : S représente les nucléotides C ou G ; N représente les nucléotides A ou C ou G ou T ; et les motifs S a N 10-100 S b , S c N 10-100 S d , S e N 10-100 S f , S g N 10-100 S h , S i N 10-100 S j , S j N 10-100 S i , S h N 10-100 S g , S f N 10-100 S e , S d N 10-100 S c et S b N 10-100 S a représentent un motif tige-boucle comprenant de 10 à 100 nucléotides N où lorsque : S a = C alors S b = G ; S a = G alors S b = C ; S c = C alors S d = G ; S c = G alors S d = C ; S e = C alors S f = G ; S e = G alors S f = C ; S g = C alors S h = G ; S g = G alors S h = C ; S i = C alors S j = G ; et S i = G alors S j = C, et ladite séquence SEQ ID NO : 589 étant représentée par la séquence : TTTAS a N 10-100 S b CTAS c N 10-100 S d AGS e N 10-100 S f TTS g N 10-100 S h ACTGS i N 10-100 S j et sa séquence miroir corrigée SEQ ID NO : 616 étant représentée par la séquence : S j N 10-100 S i GTCTS h N 10-100 S g TTS f N 10-100 S e GAS d N 10-100 S c ATCS b N 10-100 S a ATTT, dans lesquelles : S représente les nucléotides C ou G ; N représente les nucléotides A ou C ou G ou T ; et les motifs S a N 10-100 S b , S c N 10-100 S d , S e N 10-100 S f , S g N 10-100 S h , S i N 10-100 S j , S j N 10-100 S i , S h N 10-100 S g , S f N 10-100 S e , S d N 10-100 S c et S b N 10-100 S a représentent un motif tige-boucle comprenant de 10 à 100 nucléotides N où lorsque : S a = C alors S b = G ; S a = G alors S b = C ; S c = C alors S d = G ; S c = G alors S d = C ; S e = C alors S f = G ; S e = G alors S f = C ; S g = C alors S h = G ; S g = G alors S h = C ; S i = C alors S j = G ; et S i = G alors S j = C. A toutes fins utiles, il est précisé que la séquence SEQ ID NO : 586 correspond à la séquence consensus obtenue à partir des séquences SEQ ID NOs : 1 et 187, sachant que : la base des tiges-boucles sont interchangeables sans affecter l’électroactivité de l’aptamère composite électroactif de l’invention ; et les motifs tige-boucle (ou structure en épingle à cheveux) peuvent comprendre de 10 à 100 nucléotides avec la condition qu’une fois replié une tige-boucle soit formée, i.e . qu’à partir de de séquences répétées inversées de bases complémentaires, un appariement se forme de sorte qu’apparaisse localement une structure en double hélice. De même : la séquence miroir (de la séquence SEQ ID NO : 586) SEQ ID NO : 613 correspond à la séquence consensus obtenue à partir des séquences SEQ ID NOs : 32 et 218 ; la séquence SEQ ID NO : 587 correspond à la séquence consensus obtenue à partir de la séquence SEQ ID NO : 63, et sa séquence miroir SEQ ID NO : 614 correspond à la séquence consensus obtenue à partir de la séquence SEQ ID NO : 94 ; la séquence SEQ ID NO : 588 correspond à la séquence consensus obtenue à partir des séquences SEQ ID NOs : 125 et 149, et sa séquence miroir SEQ ID NO : 615 correspond à la séquence consensus obtenue à partir de la séquence SEQ ID NO : 156 ; et la séquence SEQ ID NO : 589 correspond à la séquence consensus obtenue à partir de la séquence SEQ ID NO : 249, et sa séquence miroir SEQ ID NO : 616 correspond à la séquence consensus obtenue à partir de la séquence SEQ ID NO : 280, sachant que : la base des tiges-boucles sont interchangeables sans affecter l’électroactivité de l’aptamère composite électroactif de l’invention ; et les motifs tige-boucle (ou structure en épingle à cheveux) peuvent comprendre de 10 à 100 nucléotides avec la condition qu’une fois replié une tige-boucle soit formée, i.e . qu’à partir de de séquences répétées inversées de bases complémentaires, un appariement se forme de sorte qu’apparaisse localement une structure en double hélice. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne l’utilisation d’une séquence nucléotidique électroactive ci-dessus, dans laquelle ladite séquence nucléotidique électroactive est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 590 et 607, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 617 et 634, ladite séquence SEQ ID NO : 590 étant représentée par la séquence : HDWWS a N 10-50 S b HWWS c N 10-50 S d WDS e N 10-50 S f WWS g N 10-50 S h WHWDS i N 10-50 S j et sa séquence miroir SEQ ID NO : 617 étant représentée par la séquence : S j N 10-50 S i DWHWS h N 10-50 S g WWS f N 10-50 S e DWS d N 10-50 S c WWHS b N 10-50 S a WWDH, dans lesquelles : H représente les nucléotides A ou C ou T ; D représente les nucléotides A ou G ou T ; W représente les nucléotides A ou T ; S représente les nucléotides C ou G ; N représente les nucléotides A ou C ou G ou T ; et les motifs S a N 10-50 S b , S c N 10-50 S d , S e N 10-50 S f , S g N 10-50 S h , S i N 10-50 S j , S j N 10-50 S i , S h N 10-50 S g , S f N 10-50 S e , S d N 10-50 S c et S b N 10-50 S a représentent un motif tige-boucle comprenant de 10 à 50 nucléotides N où lorsque : S a = C alors S b = G ; S a = G alors S b = C ; S c = C alors S d = G ; S c = G alors S d = C ; S e = C alors S f = G ; S e = G alors S f = C ; S g = C alors S h = G ; S g = G alors S h = C ; S i = C alors S j = G ; et S i = G alors S j = C, et ladite séquence SEQ ID NO : 607 étant représentée par la séquence : CGTAW a N 10-50 W b CTAW c N 10-50 W d AGW e N 10-50 W f TTW g N 10-50 W h ACTGW i N 10-50 W j et sa séquence miroir SEQ ID NO : 634 étant représentée par la séquence : W j N 10-50 W i GTCAW h N 10-50 W g TTW f N 10-50 W e GAW d N 10-50 W c ATCW b N 10-50 W a ATGC dans lesquelles : W représente les nucléotides A ou T ; N représente les nucléotides A ou C ou G ou T ; et les motifs W a N 10-50 W b , W c N 10-50 W d , W e N 10-50 W f , W g N 10-50 W h , W i N 10-50 W j , W j N 10-50 W i , W h N 10-50 W g , W f N 10-50 W e , W d N 10-50 W c et W b N 10-50 W a représentent un motif tige-boucle comprenant de 10 à 50 nucléotides N où lorsque : W a = A alors W b = T ; W a = T alors W b = A ; W c = A alors W d = T ; W c = T alors W d = A ; W e = A alors W f = T ; W e = T alors W f = A ; W g = A alors W h = T ; W g = T alors W h = A ; W i = A alors W j = T ; et W i = T alors W j = A. A toutes fins utiles, il est précisé que la séquence SEQ ID NO : 590 correspond à la séquence consensus obtenue à partir des séquences SEQ ID NOs : 1, 63, 125, 149, 187, 249, 311, 435 et 497, sachant que : la base des tiges-boucles sont interchangeables sans affecter l’électroactivité de l’aptamère composite électroactif de l’invention ; et les motifs tige-boucle (ou structure en épingle à cheveux) peuvent comprendre de 10 à 50 nucléotides avec la condition qu’une fois replié une tige-boucle soit formée, i.e . qu’à partir de de séquences répétées inversées de bases complémentaires, un appariement se forme de sorte qu’apparaisse localement une structure en double hélice. De même : la séquence miroir (de la séquence SEQ ID NO : 590) SEQ ID NO : 617 correspond à la séquence consensus obtenue à partir des séquences SEQ ID NOs : 32, 94, 156, 218, 280, 342, 466 et 528 ; et la séquence SEQ ID NO : 607 correspond à la séquence consensus obtenue à partir de la séquence SEQ ID NO : 373, et sa séquence miroir SEQ ID NO : 634 correspond à la séquence consensus obtenue à partir de la séquence SEQ ID NO : 404, sachant que : la base des tiges-boucles sont interchangeables sans affecter l’électroactivité de l’aptamère composite électroactif de l’invention ; et les motifs tige-boucle (ou structure en épingle à cheveux) peuvent comprendre de 10 à 50 nucléotides avec la condition qu’une fois replié une tige-boucle soit formée, i.e . qu’à partir de de séquences répétées inversées de bases complémentaires, un appariement se forme de sorte qu’apparaisse localement une structure en double hélice. Par « de 10 à 50 nucléotides », on entend également que ledit motif tige-boucle ci-dessus comprend de 10 à 40 nucléotides, de 10 à 30 nucléotides ou de 10 à 20 nucléotides. Par « de 10 à 50 nucléotides », on entend aussi que ledit motif tige-boucle ci-dessus comprend 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31, 32, 33, 34, 35, 36, 37, 38, 39, 40, 41, 42, 43, 44, 45, 46, 47, 48, 49 ou 50 nucléotides. A cet égard, il convient de noter que ces définitions s’appliquent à tous les modes de réalisation de l’invention. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne l’utilisation d’une séquence nucléotidique électroactive ci-dessus, dans laquelle ladite séquence nucléotidique électroactive est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 591, 592 et 593, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 618, 619 et 620, ladite séquence SEQ ID NO : 591 étant représentée par la séquence : YKTWS a N 10-50 S b YTWS c N 10-50 S d WKS e N 10-50 S f TTS g N 10-50 S h WYTKS i N 10-50 S j et sa séquence miroir SEQ ID NO : 618 étant représentée par la séquence : S j N 10-50 S i KTYWS h N 10-50 S g TTS f N 10-50 S e KWS d N 10-50 S c WTYS b N 10-50 S a WTKY, dans lesquelles : Y représente les nucléotides C ou T ; K représente les nucléotides G ou T ; W représente les nucléotides A ou T ; S représente les nucléotides C ou G ; N représente les nucléotides A ou C ou G ou T ; et les motifs S a N 10-50 S b , S c N 10-50 S d , S e N 10-50 S f , S g N 10-50 S h , S i N 10-50 S j , S j N 10-50 S i , S h N 10-50 S g , S f N 10-50 S e , S d N 10-50 S c et S b N 10-50 S a représentent un motif tige-boucle comprenant de 10 à 50 nucléotides N où lorsque : S a = C alors S b = G ; S a = G alors S b = C ; S c = C alors S d = G ; S c = G alors S d = C ; S e = C alors S f = G ; S e = G alors S f = C ; S g = C alors S h = G ; S g = G alors S h = C ; S i = C alors S j = G ; et S i = G alors S j = C, ladite séquence SEQ ID NO : 592 étant représentée par la séquence : TTTTS a N 10-50 S b TTTS c N 10-50 S d TTS e N 10-50 S f TTS g N 10-50 S h TTTTS i N 10-50 S j et sa séquence miroir SEQ ID NO : 619 étant représentée par la séquence : S j N 10-50 S i TTTTS h N 10-50 S g TTS f N 10-50 S e TTS d N 10-50 S c TTTS b N 10-50 S a TTTT, dans lesquelles : S représente les nucléotides C ou G ; N représente les nucléotides A ou C ou G ou T ; et les motifs S a N 10-50 S b , S c N 10-50 S d , S e N 10-50 S f , S g N 10-50 S h , S i N 10-50 S j , S j N 10-50 S i , S h N 10-50 S g , S f N 10-50 S e , S d N 10-50 S c et S b N 10-50 S a représentent un motif tige-boucle comprenant de 10 à 50 nucléotides N où lorsque : S a = C alors S b = G ; S a = G alors S b = C ; S c = C alors S d = G ; S c = G alors S d = C ; S e = C alors S f = G ; S e = G alors S f = C ; S g = C alors S h = G ; S g = G alors S h = C ; S i = C alors S j = G ; et S i = G alors S j = C, et ladite séquence SEQ ID NO : 593 étant représentée par la séquence : AAAAS a N 10-50 S b AAAS c N 10-50 S d AAS e N 10-50 S f AAS g N 10-50 S h AAAAS i N 10-50 S j et sa séquence miroir SEQ ID NO : 620 étant représentée par la séquence : S j N 10-50 S i AAAAS h N 10-50 S g AAS f N 10-50 S e AAS d N 10-50 S c AAAS b N 10-50 S a AAAA, dans lesquelles : S représente les nucléotides C ou G ; N représente les nucléotides A ou C ou G ou T ; et les motifs S a N 10-50 S b , S c N 10-50 S d , S e N 10-50 S f , S g N 10-50 S h , S i N 10-50 S j , S j N 10-50 S i , S h N 10-50 S g , S f N 10-50 S e , S d N 10-50 S c et S b N 10-50 S a représentent un motif tige-boucle comprenant de 10 à 50 nucléotides N où lorsque : S a = C alors S b = G ; S a = G alors S b = C ; S c = C alors S d = G ; S c = G alors S d = C ; S e = C alors S f = G ; S e = G alors S f = C ; S g = C alors S h = G ; S g = G alors S h = C ; S i = C alors S j = G ; et S i = G alors S j = C. A toutes fins utiles, il est précisé que la séquence SEQ ID NO : 591 correspond à la séquence consensus obtenue à partir des séquences SEQ ID NOs : 1, 63, 149, 187 et 249, sachant que : la base des tiges-boucles sont interchangeables sans affecter l’électroactivité de l’aptamère composite électroactif de l’invention ; et les motifs tige-boucle (ou structure en épingle à cheveux) peuvent comprendre de 10 à 50 nucléotides avec la condition qu’une fois replié une tige-boucle soit formée, i.e . qu’à partir de de séquences répétées inversées de bases complémentaires, un appariement se forme de sorte qu’apparaisse localement une structure en double hélice. De même : la séquence miroir (de la séquence SEQ ID NO : 591) SEQ ID NO : 618 correspond à la séquence consensus obtenue à partir des séquences SEQ ID NOs : 32, 94, 218 et 280 ; la séquence SEQ ID NO : 592 correspond à la séquence consensus obtenue à partir des séquences SEQ ID NOs : 311 et 497, et sa séquence miroir SEQ ID NO : 619 correspond à la séquence consensus obtenue à partir des séquences SEQ ID NOs : 342 et 528 ; et la séquence SEQ ID NO : 593 correspond à la séquence consensus obtenue à partir de la séquence SEQ ID NO : 435, et sa séquence miroir SEQ ID NO : 620 correspond à la séquence consensus obtenue à partir de la séquence SEQ ID NO : 466, sachant que : la base des tiges-boucles sont interchangeables sans affecter l’électroactivité de l’aptamère composite électroactif de l’invention ; et les motifs tige-boucle (ou structure en épingle à cheveux) peuvent comprendre de 10 à 50 nucléotides avec la condition qu’une fois replié une tige-boucle soit formée, i.e . qu’à partir de de séquences répétées inversées de bases complémentaires, un appariement se forme de sorte qu’apparaisse localement une structure en double hélice. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne l’utilisation d’une séquence nucléotidique électroactive ci-dessus, dans laquelle ladite séquence nucléotidique électroactive est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 594, 595, 596 et 597, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 621, 622, 623 et 624, ladite séquence SEQ ID NO : 594 étant représentée par la séquence : CGTAS a N 10-50 S b CTAS c N 10-50 S d AGS e N 10-50 S f TTS g N 10-50 S h ACTGS i N 10-50 S j et sa séquence miroir corrigée SEQ ID NO : 621 étant représentée par la séquence : S j N 10-50 S i GTCTS h N 10-50 S g TTS f N 10-50 S e GAS d N 10-50 S c ATCS b N 10-50 S a ATGC, dans lesquelles : S représente les nucléotides C ou G ; N représente les nucléotides A ou C ou G ou T ; et les motifs S a N 10-50 S b , S c N 10-50 S d , S e N 10-50 S f , S g N 10-50 S h , S i N 10-50 S j , S j N 10-50 S i , S h N 10-50 S g , S f N 10-50 S e , S d N 10-50 S c et S b N 10-50 S a représentent un motif tige-boucle comprenant de 10 à 50 nucléotides N où lorsque : S a = C alors S b = G ; S a = G alors S b = C ; S c = C alors S d = G ; S c = G alors S d = C ; S e = C alors S f = G ; S e = G alors S f = C ; S g = C alors S h = G ; S g = G alors S h = C ; S i = C alors S j = G ; et S i = G alors S j = C, ladite séquence SEQ ID NO : 595 étant représentée par la séquence : CGTTS a N 10-50 S b TTTS c N 10-50 S d AGS e N 10-50 S f TTS g N 10-50 S h ACTGS i N 10-50 S j et sa séquence miroir corrigée SEQ ID NO : 622 étant représentée par la séquence : S j N 10-50 S i GTCTS h N 10-50 S g TTS f N 10-50 S e GAS d N 10-50 S c TTTS b N 10-50 S a TTGC, dans lesquelles : S représente les nucléotides C ou G ; N représente les nucléotides A ou C ou G ou T ; et les motifs S a N 10-50 S b , S c N 10-50 S d , S e N 10-50 S f , S g N 10-50 S h , S i N 10-50 S j , S j N 10-50 S i , S h N 10-50 S g , S f N 10-50 S e , S d N 10-50 S c et S b N 10-50 S a représentent un motif tige-boucle comprenant de 10 à 50 nucléotides N où lorsque : S a = C alors S b = G ; S a = G alors S b = C ; S c = C alors S d = G ; S c = G alors S d = C ; S e = C alors S f = G ; S e = G alors S f = C ; S g = C alors S h = G ; S g = G alors S h = C ; S i = C alors S j = G ; et S i = G alors S j = C, ladite séquence SEQ ID NO : 596 étant représentée par la séquence : CGTTS a N 10-50 S b TTTS c N 10-50 S d TTS e N 10-50 S f TTS g N 10-50 S h TTTTS i N 10-50 S j et sa séquence miroir SEQ ID NO : 623 étant représentée par la séquence : S j N 10-50 S i TTTTS h N 10-50 S g TTS f N 10-50 S e TTS d N 10-50 S c TTTS b N 10-50 S a TTGC, dans lesquelles : S représente les nucléotides C ou G ; N représente les nucléotides A ou C ou G ou T ; et les motifs S a N 10-50 S b , S c N 10-50 S d , S e N 10-50 S f , S g N 10-50 S h , S i N 10-50 S j , S j N 10-50 S i , S h N 10-50 S g , S f N 10-50 S e , S d N 10-50 S c et S b N 10-50 S a représentent un motif tige-boucle comprenant de 10 à 50 nucléotides N où lorsque : S a = C alors S b = G ; S a = G alors S b = C ; S c = C alors S d = G ; S c = G alors S d = C ; S e = C alors S f = G ; S e = G alors S f = C ; S g = C alors S h = G ; S g = G alors S h = C ; S i = C alors S j = G ; et S i = G alors S j = C, et ladite séquence SEQ ID NO : 597 étant représentée par la séquence : TTTAS a N 10-50 S b CTAS c N 10-50 S d AGS e N 10-50 S f TTS g N 10-50 S h ACTGS i N 10-50 S j et sa séquence miroir corrigée SEQ ID NO : 624 étant représentée par la séquence : S j N 10-50 S i GTCTS h N 10-50 S g TTS f N 10-50 S e GAS d N 10-50 S c ATCS b N 10-50 S a ATTT, dans lesquelles : S représente les nucléotides C ou G ; N représente les nucléotides A ou C ou G ou T ; et les motifs S a N 10-50 S b , S c N 10-50 S d , S e N 10-50 S f , S g N 10-50 S h , S i N 10-50 S j , S j N 10-50 S i , S h N 10-50 S g , S f N 10-50 S e , S d N 10-50 S c et S b N 10-50 S a représentent un motif tige-boucle comprenant de 10 à 50 nucléotides N où lorsque : S a = C alors S b = G ; S a = G alors S b = C ; S c = C alors S d = G ; S c = G alors S d = C ; S e = C alors S f = G ; S e = G alors S f = C ; S g = C alors S h = G ; S g = G alors S h = C ; S i = C alors S j = G ; et S i = G alors S j = C. A toutes fins utiles, il est précisé que la séquence SEQ ID NO : 594 correspond à la séquence consensus obtenue à partir des séquences SEQ ID NOs : 1 et 187, sachant que : la base des tiges-boucles sont interchangeables sans affecter l’électroactivité de l’aptamère composite électroactif de l’invention ; et les motifs tige-boucle (ou structure en épingle à cheveux) peuvent comprendre de 10 à 50 nucléotides avec la condition qu’une fois replié une tige-boucle soit formée, i.e . qu’à partir de de séquences répétées inversées de bases complémentaires, un appariement se forme de sorte qu’apparaisse localement une structure en double hélice. De même : la séquence miroir (de la séquence SEQ ID NO : 594) SEQ ID NO : 621 correspond à la séquence consensus obtenue à partir des séquences SEQ ID NOs : 32 et 218 ; la séquence SEQ ID NO : 595 correspond à la séquence consensus obtenue à partir de la séquence SEQ ID NO : 63, et sa séquence miroir SEQ ID NO : 622 correspond à la séquence consensus obtenue à partir de la séquence SEQ ID NO : 94 ; la séquence SEQ ID NO : 596 correspond à la séquence consensus obtenue à partir des séquences SEQ ID NOs : 125 et 149, et sa séquence miroir SEQ ID NO : 623 correspond à la séquence consensus obtenue à partir de la séquence SEQ ID NO : 156 ; et la séquence SEQ ID NO : 597 correspond à la séquence consensus obtenue à partir de la séquence SEQ ID NO : 249, et sa séquence miroir SEQ ID NO : 624 correspond à la séquence consensus obtenue à partir de la séquence SEQ ID NO : 280, sachant que : la base des tiges-boucles sont interchangeables sans affecter l’électroactivité de l’aptamère composite électroactif de l’invention ; et les motifs tige-boucle (ou structure en épingle à cheveux) peuvent comprendre de 10 à 50 nucléotides avec la condition qu’une fois replié une tige-boucle soit formée, i.e . qu’à partir de de séquences répétées inversées de bases complémentaires, un appariement se forme de sorte qu’apparaisse localement une structure en double hélice. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne l’utilisation d’une séquence nucléotidique électroactive ci-dessus, dans laquelle ladite séquence nucléotidique électroactive est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 598 et 608, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 625 et 635, ladite séquence SEQ ID NO : 598 étant représentée par la séquence : HDWWS a N 10 S b HWWS c N 10 S d WDS e N 10 S f WWS g N 10 S h WHWDS i N 10 S j et sa séquence miroir SEQ ID NO : 625 étant représentée par la séquence : S j N 10 S i DWHWS h N 10 S g WWS f N 10 S e DWS d N 10 S c WWHS b N 10 S a WWDH, dans lesquelles : H représente les nucléotides A ou C ou T ; D représente les nucléotides A ou G ou T ; W représente les nucléotides A ou T ; S représente les nucléotides C ou G ; N représente les nucléotides A ou C ou G ou T ; et les motifs S a N 10 S b , S c N 10 S d , S e N 10 S f , S g N 10 S h , S i N 10 S j , S j N 10 S i , S h N 10 S g , S f N 10 S e , S d N 10 S c et S b N 10 S a représentent un motif tige-boucle comprenant 10 nucléotides N où lorsque : S a = C alors S b = G ; S a = G alors S b = C ; S c = C alors S d = G ; S c = G alors S d = C ; S e = C alors S f = G ; S e = G alors S f = C ; S g = C alors S h = G ; S g = G alors S h = C ; S i = C alors S j = G ; et S i = G alors S j = C, et ladite séquence SEQ ID NO : 608 étant représentée par la séquence : CGTAW a N 10 W b CTAW c N 10 W d AGW e N 10 W f TTW g N 10 W h ACTGW i N 10 W j et sa séquence miroir SEQ ID NO : 635 étant représentée par la séquence : W j N 10 W i GTCAW h N 10 W g TTW f N 10 W e GAW d N 10 W c ATCW b N 10 W a ATGC dans lesquelles : W représente les nucléotides A ou T ; N représente les nucléotides A ou C ou G ou T ; et les motifs W a N 10 W b , W c N 10 W d , W e N 10 W f , W g N 10 W h , W i N 10 W j , W j N 10 W i , W h N 10 W g , W f N 10 W e , W d N 10 W c et W b N 10 W a représentent un motif tige-boucle comprenant 10 nucléotides N où lorsque : W a = A alors W b = T ; W a = T alors W b = A ; W c = A alors W d = T ; W c = T alors W d = A ; W e = A alors W f = T ; W e = T alors W f = A ; W g = A alors W h = T ; W g = T alors W h = A ; W i = A alors W j = T ; et W i = T alors W j = A. A toutes fins utiles, il est précisé que la séquence SEQ ID NO : 598 correspond à la séquence consensus obtenue à partir des séquences SEQ ID NOs : 1, 63, 125, 149, 187, 249, 311, 435 et 497, sachant que : la base des tiges-boucles sont interchangeables sans affecter l’électroactivité de l’aptamère composite électroactif de l’invention ; et les motifs tige-boucle (ou structure en épingle à cheveux) comprennent 10 nucléotides avec la condition qu’une fois replié une tige-boucle soit formée, i.e . qu’à partir de de séquences répétées inversées de bases complémentaires, un appariement se forme de sorte qu’apparaisse localement une structure en double hélice. De même : la séquence miroir (de la séquence SEQ ID NO : 598) SEQ ID NO : 625 correspond à la séquence consensus obtenue à partir des séquences SEQ ID NOs : 32, 94, 156, 218, 280, 342, 466 et 528 ; et la séquence SEQ ID NO : 608 correspond à la séquence consensus obtenue à partir de la séquence SEQ ID NO : 373, et sa séquence miroir SEQ ID NO : 635 correspond à la séquence consensus obtenue à partir de la séquence SEQ ID NO : 404, sachant que : la base des tiges-boucles sont interchangeables sans affecter l’électroactivité de l’aptamère composite électroactif de l’invention ; et les motifs tige-boucle (ou structure en épingle à cheveux) comprennent 10 nucléotides avec la condition qu’une fois replié une tige-boucle soit formée, i.e . qu’à partir de de séquences répétées inversées de bases complémentaires, un appariement se forme de sorte qu’apparaisse localement une structure en double hélice. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne l’utilisation d’une séquence nucléotidique électroactive ci-dessus, dans laquelle ladite séquence nucléotidique électroactive est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 599, 600 et 601, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 626, 627 et 628, ladite séquence SEQ ID NO : 599 étant représentée par la séquence : YKTWS a N 10 S b YTWS c N 10 S d WKS e N 10 S f TTS g N 10 S h WYTKS i N 10 S j et sa séquence miroir SEQ ID NO : 626 étant représentée par la séquence : S j N 10 S i KTYWS h N 10 S g TTS f N 10 S e KWS d N 10 S c WTYS b N 10 S a WTKY, dans lesquelles : Y représente les nucléotides C ou T ; K représente les nucléotides G ou T ; W représente les nucléotides A ou T ; S représente les nucléotides C ou G ; N représente les nucléotides A ou C ou G ou T ; et les motifs S a N 10 S b , S c N 10 S d , S e N 10 S f , S g N 10 S h , S i N 10 S j , S j N 10 S i , S h N 10 S g , S f N 10 S e , S d N 10 S c et S b N 10 S a représentent un motif tige-boucle comprenant 10 nucléotides N où lorsque : S a = C alors S b = G ; S a = G alors S b = C ; S c = C alors S d = G ; S c = G alors S d = C ; S e = C alors S f = G ; S e = G alors S f = C ; S g = C alors S h = G ; S g = G alors S h = C ; S i = C alors S j = G ; et S i = G alors S j = C, ladite séquence SEQ ID NO : 600 étant représentée par la séquence : TTTTS a N 10 S b TTTS c N 10 S d TTS e N 10 S f TTS g N 10 S h TTTTS i N 10 S j et sa séquence miroir SEQ ID NO : 627 étant représentée par la séquence : S j N 10 S i TTTTS h N 10 S g TTS f N 10 S e TTS d N 10 S c TTTS b N 10 S a TTTT, dans lesquelles : S représente les nucléotides C ou G ; N représente les nucléotides A ou C ou G ou T ; et les motifs S a N 10 S b , S c N 10 S d , S e N 10 S f , S g N 10 S h , S i N 10 S j , S j N 10 S i , S h N 10 S g , S f N 10 S e , S d N 10 S c et S b N 10 S a représentent un motif tige-boucle comprenant 10 nucléotides N où lorsque : S a = C alors S b = G ; S a = G alors S b = C ; S c = C alors S d = G ; S c = G alors S d = C ; S e = C alors S f = G ; S e = G alors S f = C ; S g = C alors S h = G ; S g = G alors S h = C ; S i = C alors S j = G ; et S i = G alors S j = C, et ladite séquence SEQ ID NO : 601 étant représentée par la séquence : AAAAS a N 10 S b AAAS c N 10 S d AAS e N 10 S f AAS g N 10 S h AAAAS i N 10 S j et sa séquence miroir SEQ ID NO : 628 étant représentée par la séquence : S j N 10 S i AAAAS h N 10 S g AAS f N 10 S e AAS d N 10 S c AAAS b N 10 S a AAAA, dans lesquelles : S représente les nucléotides C ou G ; N représente les nucléotides A ou C ou G ou T ; et les motifs S a N 10 S b , S c N 10 S d , S e N 10 S f , S g N 10 S h , S i N 10 S j , S j N 10 S i , S h N 10 S g , S f N 10 S e , S d N 10 S c et S b N 10 S a représentent un motif tige-boucle comprenant 10 nucléotides N où lorsque : S a = C alors S b = G ; S a = G alors S b = C ; S c = C alors S d = G ; S c = G alors S d = C ; S e = C alors S f = G ; S e = G alors S f = C ; S g = C alors S h = G ; S g = G alors S h = C ; S i = C alors S j = G ; et S i = G alors S j = C. A toutes fins utiles, il est précisé que la séquence SEQ ID NO : 599 correspond à la séquence consensus obtenue à partir des séquences SEQ ID NOs : 1, 63, 149, 187 et 249, sachant que : la base des tiges-boucles sont interchangeables sans affecter l’électroactivité de l’aptamère composite électroactif de l’invention ; et les motifs tige-boucle (ou structure en épingle à cheveux) comprennent 10 nucléotides avec la condition qu’une fois replié une tige-boucle soit formée, i.e . qu’à partir de de séquences répétées inversées de bases complémentaires, un appariement se forme de sorte qu’apparaisse localement une structure en double hélice. De même : la séquence miroir (de la séquence SEQ ID NO : 599) SEQ ID NO : 626 correspond à la séquence consensus obtenue à partir des séquences SEQ ID NOs : 32, 94, 218 et 280 ; la séquence SEQ ID NO : 600 correspond à la séquence consensus obtenue à partir des séquences SEQ ID NOs : 311 et 497, et sa séquence miroir SEQ ID NO : 627 correspond à la séquence consensus obtenue à partir des séquences SEQ ID NOs : 342 et 528 ; et la séquence SEQ ID NO : 601 correspond à la séquence consensus obtenue à partir de la séquence SEQ ID NO : 435, et sa séquence miroir SEQ ID NO : 628 correspond à la séquence consensus obtenue à partir de la séquence SEQ ID NO : 466, sachant que : la base des tiges-boucles sont interchangeables sans affecter l’électroactivité de l’aptamère composite électroactif de l’invention ; et les motifs tige-boucle (ou structure en épingle à cheveux) comprennent 10 nucléotides avec la condition qu’une fois replié une tige-boucle soit formée, i.e . qu’à partir de de séquences répétées inversées de bases complémentaires, un appariement se forme de sorte qu’apparaisse localement une structure en double hélice. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne l’utilisation d’une séquence nucléotidique électroactive ci-dessus, dans laquelle ladite séquence nucléotidique électroactive est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 602, 603, 604 et 605, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 629, 630, 631 et 632, ladite séquence SEQ ID NO : 602 étant représentée par la séquence : CGTAS a N 10 S b CTAS c N 10 S d AGS e N 10 S f TTS g N 10 S h ACTGS i N 10 S j et sa séquence miroir corrigée SEQ ID NO : 629 étant représentée par la séquence : S j N 10 S i GTCTS h N 10 S g TTS f N 10 S e GAS d N 10 S c ATCS b N 10 S a ATGC, dans lesquelles : S représente les nucléotides C ou G ; N représente les nucléotides A ou C ou G ou T ; et les motifs S a N 10 S b , S c N 10 S d , S e N 10 S f , S g N 10 S h , S i N 10 S j , S j N 10 S i , S h N 10 S g , S f N 10 S e , S d N 10 S c et S b N 10 S a représentent un motif tige-boucle comprenant 10 nucléotides N où lorsque : S a = C alors S b = G ; S a = G alors S b = C ; S c = C alors S d = G ; S c = G alors S d = C ; S e = C alors S f = G ; S e = G alors S f = C ; S g = C alors S h = G ; S g = G alors S h = C ; S i = C alors S j = G ; et S i = G alors S j = C, ladite séquence SEQ ID NO : 603 étant représentée par la séquence : CGTTS a N 10 S b TTTS c N 10 S d AGS e N 10 S f TTS g N 10 S h ACTGS i N 10 S j et sa séquence miroir corrigée SEQ ID NO : 630 étant représentée par la séquence : S j N 10 S i GTCTS h N 10 S g TTS f N 10 S e GAS d N 10 S c TTTS b N 10 S a TTGC, dans lesquelles : S représente les nucléotides C ou G ; N représente les nucléotides A ou C ou G ou T ; et les motifs S a N 10 S b , S c N 10 S d , S e N 10 S f , S g N 10 S h , S i N 10 S j , S j N 10 S i , S h N 10 S g , S f N 10 S e , S d N 10 S c et S b N 10 S a représentent un motif tige-boucle comprenant 10 nucléotides N où lorsque : S a = C alors S b = G ; S a = G alors S b = C ; S c = C alors S d = G ; S c = G alors S d = C ; S e = C alors S f = G ; S e = G alors S f = C ; S g = C alors S h = G ; S g = G alors S h = C ; S i = C alors S j = G ; et S i = G alors S j = C, ladite séquence SEQ ID NO : 604 étant représentée par la séquence : CGTTS a N 10 S b TTTS c N 10 S d TTS e N 10 S f TTS g N 10 S h TTTTS i N 10 S j et sa séquence miroir SEQ ID NO : 631 étant représentée par la séquence : S j N 10 S i TTTTS h N 10 S g TTS f N 10 S e TTS d N 10 S c TTTS b N 10 S a TTGC, dans lesquelles : S représente les nucléotides C ou G ; N représente les nucléotides A ou C ou G ou T ; et les motifs S a N 10 S b , S c N 10 S d , S e N 10 S f , S g N 10 S h , S i N 10 S j , S j N 10 S i , S h N 10 S g , S f N 10 S e , S d N 10 S c et S b N 10 S a représentent un motif tige-boucle comprenant 10 nucléotides N où lorsque : S a = C alors S b = G ; S a = G alors S b = C ; S c = C alors S d = G ; S c = G alors S d = C ; S e = C alors S f = G ; S e = G alors S f = C ; S g = C alors S h = G ; S g = G alors S h = C ; S i = C alors S j = G ; et S i = G alors S j = C, et ladite séquence SEQ ID NO : 605 étant représentée par la séquence : TTTAS a N 10 S b CTAS c N 10 S d AGS e N 10 S f TTS g N 10 S h ACTGS i N 10 S j et sa séquence miroir corrigée SEQ ID NO : 632 étant représentée par la séquence : S j N 10 S i GTCTS h N 10 S g TTS f N 10 S e GAS d N 10 S c ATCS b N 10 S a ATTT, dans lesquelles : S représente les nucléotides C ou G ; N représente les nucléotides A ou C ou G ou T ; et les motifs S a N 10 S b , S c N 10 S d , S e N 10 S f , S g N 10 S h , S i N 10 S j , S j N 10 S i , S h N 10 S g , S f N 10 S e , S d N 10 S c et S b N 10 S a représentent un motif tige-boucle comprenant 10 nucléotides N où lorsque : S a = C alors S b = G ; S a = G alors S b = C ; S c = C alors S d = G ; S c = G alors S d = C ; S e = C alors S f = G ; S e = G alors S f = C ; S g = C alors S h = G ; S g = G alors S h = C ; S i = C alors S j = G ; et S i = G alors S j = C. A toutes fins utiles, il est précisé que la séquence SEQ ID NO : 602 correspond à la séquence consensus obtenue à partir des séquences SEQ ID NOs : 1 et 187, sachant que : la base des tiges-boucles sont interchangeables sans affecter l’électroactivité de l’aptamère composite électroactif de l’invention ; et les motifs tige-boucle (ou structure en épingle à cheveux) comprennent 10 nucléotides avec la condition qu’une fois replié une tige-boucle soit formée, i.e . qu’à partir de de séquences répétées inversées de bases complémentaires, un appariement se forme de sorte qu’apparaisse localement une structure en double hélice. De même : la séquence miroir (de la séquence SEQ ID NO : 602) SEQ ID NO : 629 correspond à la séquence consensus obtenue à partir des séquences SEQ ID NOs : 32 et 218 ; la séquence SEQ ID NO : 603 correspond à la séquence consensus obtenue à partir de la séquence SEQ ID NO : 63, et sa séquence miroir SEQ ID NO : 630 correspond à la séquence consensus obtenue à partir de la séquence SEQ ID NO : 94 ; la séquence SEQ ID NO : 604 correspond à la séquence consensus obtenue à partir des séquences SEQ ID NOs : 125 et 149, et sa séquence miroir SEQ ID NO : 631 correspond à la séquence consensus obtenue à partir de la séquence SEQ ID NO : 156 ; et la séquence SEQ ID NO : 605 correspond à la séquence consensus obtenue à partir de la séquence SEQ ID NO : 249, et sa séquence miroir SEQ ID NO : 632 correspond à la séquence consensus obtenue à partir de la séquence SEQ ID NO : 280, sachant que : la base des tiges-boucles sont interchangeables sans affecter l’électroactivité de l’aptamère composite électroactif de l’invention ; et les motifs tige-boucle (ou structure en épingle à cheveux) comprennent 10 nucléotides avec la condition qu’une fois replié une tige-boucle soit formée, i.e . qu’à partir de de séquences répétées inversées de bases complémentaires, un appariement se forme de sorte qu’apparaisse localement une structure en double hélice. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne l’utilisation d’une séquence nucléotidique électroactive ci-dessus, dans laquelle ladite séquence nucléotidique électroactive est différente des séquences SEQ ID NOs : 637 et 638. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne l’utilisation d’une séquence nucléotidique électroactive ci-dessus, dans laquelle ladite séquence nucléotidique électroactive est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 1 à 31, 63 à 93, 125 à 155, 187 à 217, 249 à 279, 311 à 341, 373 à 403, 435 à 465, à 497 à 527 et 559 ; leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 32 à 62, 94 à 124, 156 à 186, 218 à 248, 280 à 310, 342 à 372, 404 à 434, 466 à 496, 528 à 558 et 636 ; et les séquences ayant au moins 95 %, de préférence au moins 98 %, d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 1 à 559 et 636, en particulier ladite séquence nucléotidique électroactive étant choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 1 à 31, 63 à 93, 125 à 155, 187 à 217, 249 à 279, 311 à 341, 373 à 403, 435 à 465, à 497 à 527 et 559, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 32 à 62, 94 à 124, 156 à 186, 218 à 248, 280 à 310, 342 à 372, 404 à 434, 466 à 496, 528 à 558 et 636. Par « pourcentage d’identité », on entend le pourcentage déterminé par comparaison directe de deux séquences oligonucléotidiques, en déterminant le nombre de nucléotides identiques entre les deux séquences, puis en le divisant par le nombre de nucléotides de la séquence la plus longue des deux, et en multipliant le résultat par 100. Par « au moins 95 % » on entend également que le pourcentage d’identité susmentionné est d’au moins 96 %, d’au moins 97 %, d’au moins 98 %, d’au moins 99 % ou de 100 %. A cet égard, il convient de noter que cette définition s’applique à tous les modes de réalisation de l’invention. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne l’utilisation d’une séquence nucléotidique électroactive ci-dessus, dans laquelle ladite séquence nucléotidique électroactive est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 1 à 31, 63 à 93, 125 à 155, 187 à 217, 249 à 279, 311 à 341, 373 à 403, 435 à 465, à 497 à 527 et 559, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 32 à 62, 94 à 124, 156 à 186, 218 à 248, 280 à 310, 342 à 372, 404 à 434, 466 à 496, 528 à 558 et 636. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne l’utilisation d’une séquence nucléotidique électroactive ci-dessus, dans laquelle ladite séquence nucléotidique électroactive est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 1, 32, 63, 149, 187 et 249. De manière générale, un deuxième objet de l’Invention concerne un aptamère composite électroactif ci-dessus capable de fixer spécifiquement au moins une molécule d’intérêt, ledit aptamère composite électroactif ayant une structure secondaire comprenant un anneau central électroactif et au moins cinq tiges-boucles, et comprenant deux éléments : une séquence nucléotidique électroactive choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 582 et 606 telles que définies ci-dessus, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 609 et 633 telles que définies ci-dessus ; et au moins un fragment d’au moins un aptamère donneur, la structure secondaire dudit au moins un fragment comprenant une tige-boucle capable de fixer spécifiquement une molécule d’intérêt, ledit au moins un fragment ayant été introduit par addition ou substitution dans ladite séquence nucléotidique électroactive, et dans lequel l’électroactivité de l’anneau central électroactif dudit aptamère composite électroactif est préservée par rapport à celle de l’anneau central électroactif de ladite séquence nucléotidique électroactive, et la capacité de fixer spécifiquement ladite molécule d’intérêt dudit au moins un fragment dudit aptamère composite électroactif étant préservée par rapport à celle dudit au moins un fragment d’au moins un aptamère donneur. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne l’aptamère composite électroactif ci-dessus capable de fixer spécifiquement au moins une molécule d’intérêt, ledit aptamère composite électroactif ayant une structure secondaire comprenant un anneau central électroactif (1’) et au moins cinq tiges-boucles (2’, 3’), et comprenant deux éléments : une séquence nucléotidique électroactive choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 582 et 606 telles que définies ci-dessus, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 609 et 633 telles que définies ci-dessus, ladite séquence nucléotidique électroactive ayant une structure secondaire comprenant un anneau central électroactif (1) et cinq tiges-boucles (2), l’électroactivité de l’anneau central électroactif (1) pouvant être déterminée au moyen des méthodes de mesures électrochimiques telle que la voltammétrie cyclique ou la voltammétrie à impulsions différentielles ; et au moins un fragment d’au moins un aptamère donneur, la structure secondaire dudit au moins un fragment comprenant une tige-boucle (3) capable de fixer spécifiquement une molécule d’intérêt, ledit au moins un fragment ayant été introduit par addition ou substitution dans ladite séquence nucléotidique électroactive, et dans lequel l’électroactivité de l’anneau central électroactif (1’) dudit aptamère composite électroactif est préservée par rapport à celle de l’anneau central électroactif (1) de ladite séquence nucléotidique électroactive, ladite électroactivité pouvant être déterminée au moyen des méthodes de mesures électrochimiques telle que la voltammétrie cyclique ou la voltammétrie à impulsions différentielles, et la capacité de fixer spécifiquement ladite molécule d’intérêt dudit au moins un fragment dudit aptamère composite électroactif étant préservée par rapport à celle dudit au moins un fragment d’au moins un aptamère donneur, ladite fixation pouvant être déterminée au moyen des méthodes de mesures électrochimiques telle que la voltammétrie cyclique ou la voltammétrie à impulsions différentielles. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne l’aptamère composite électroactif ci-dessus, dans lequel ladite séquence nucléotidique électroactive est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 583, 584 et 585, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 610, 611 et 612 telles que définies ci-dessus. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne l’aptamère composite électroactif ci-dessus, dans lequel ladite séquence nucléotidique électroactive est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 586, 587, 588 et 589, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 613, 614, 615 et 616 telles que définies ci-dessus. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne l’aptamère composite électroactif ci-dessus, dans lequel ladite séquence nucléotidique électroactive est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 590 et 607, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 617 et 634 telles que définies ci-dessus. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne l’aptamère composite électroactif ci-dessus, dans lequel ladite séquence nucléotidique électroactive est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 591, 592 et 593, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 618, 619 et 620 telles que définies ci-dessus. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne l’aptamère composite électroactif ci-dessus, dans lequel ladite séquence nucléotidique électroactive est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 594, 595, 596 et 597, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 621, 622, 623 et 624 telles que définies ci-dessus. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne l’aptamère composite électroactif ci-dessus, dans lequel ladite séquence nucléotidique électroactive est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 598 et 608 telles que définies ci-dessus, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 625 et 635 telles que définies ci-dessus. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne l’aptamère composite électroactif ci-dessus, dans lequel ladite séquence nucléotidique électroactive est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 599, 600 et 601, telles que définies ci-dessus et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 626, 627 et 628 telles que définies ci-dessus. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne l’aptamère composite électroactif ci-dessus, dans lequel ladite séquence nucléotidique électroactive est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 602, 603, 604 et 605, telles que définies ci-dessus et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 629, 630, 631 et 632 telles que définies ci-dessus. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne l’aptamère composite électroactif ci-dessus, dans lequel ladite séquence nucléotidique électroactive est différente des séquences SEQ ID NOs : 637 et 638. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne l’aptamère composite électroactif ci-dessus, dans lequel ladite séquence nucléotidique électroactive est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 1 à 31, 63 à 93, 125 à 155, 187 à 217, 249 à 279, 311 à 341, 373 à 403, 435 à 465, à 497 à 527 et 559 ; leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 32 à 62, 94 à 124, 156 à 186, 218 à 248, 280 à 310, 342 à 372, 404 à 434, 466 à 496, 528 à 558 et 636 ; et les séquences ayant au moins 95 %, de préférence au moins 98 %, d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 1 à 559 et 636, en particulier ladite séquence nucléotidique électroactive étant choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 1 à 31, 63 à 93, 125 à 155, 187 à 217, 249 à 279, 311 à 341, 373 à 403, 435 à 465, à 497 à 527 et 559, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 32 à 62, 94 à 124, 156 à 186, 218 à 248, 280 à 310, 342 à 372, 404 à 434, 466 à 496, 528 à 558 et 636. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne l’aptamère composite électroactif ci-dessus, dans lequel ladite séquence nucléotidique électroactive est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 1 à 31, 63 à 93, 125 à 155, 187 à 217, 249 à 279, 311 à 341, 373 à 403, 435 à 465, à 497 à 527 et 559, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 32 à 62, 94 à 124, 156 à 186, 218 à 248, 280 à 310, 342 à 372, 404 à 434, 466 à 496, 528 à 558 et 636 Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne l’aptamère composite électroactif ci-dessus, dans lequel ladite séquence nucléotidique électroactive est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 1, 32, 63, 149, 187 et 249. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne l’aptamère composite électroactif ci-dessus, dans lequel ledit au moins un aptamère donneur cible spécifiquement une molécule d’intérêt choisie parmi : un antibiotique (pénicillines, quinolones, macrolides, etc .), un biomarqueur (maladies cardiovasculaires, cancer, maladie neurodégénératives, maladie auto-immune, etc. ), une hormone, un médicament, un polluant anthropique (pesticides, insecticides, fongicides, herbicides, etc .), une protéine et une toxine (fongiques, microbiennes, algales, etc. ). Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne l’aptamère composite électroactif ci-dessus, dans lequel ledit au moins un aptamère donneur cible spécifiquement une molécule d’intérêt choisie parmi : la métronidazole A, la tétracycline, l’estradiol A, le bisphénol A, la saxitoxine et la troponine. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne l’aptamère composite électroactif ci-dessus, dans lequel ledit au moins un fragment d’au moins un aptamère donneur comprend de 10 à 100 nucléotides, en particulier de 10 à 50 nucléotides. Par « de 10 à 100 nucléotides », on entend également que ledit au moins un fragment d’au moins un aptamère donneur comprend de 10 à 90 nucléotides, de 10 à 80 nucléotides, de 10 à 70 nucléotides, de 10 à 60 nucléotides, de 10 à 50 nucléotides, de 10 à 40 nucléotides, de 10 à 30 nucléotides ou de 10 à 20 nucléotides. Par « de 10 à 100 nucléotides », on entend aussi que ledit au moins un fragment d’au moins un aptamère donneur comprend 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31, 32, 33, 34, 35, 36, 37, 38, 39, 40, 41, 42, 43, 44, 45, 46, 47, 48, 49, 50, 51, 52, 53, 54, 55, 56, 57, 58, 59, 60, 61, 62, 63, 64, 65, 66, 67, 68, 69, 70, 71, 72, 73, 74, 75, 76, 77, 78, 79, 80, 81, 82, 83, 84, 85, 86, 87, 88, 89, 90, 91, 92, 93, 94, 95, 96, 97, 98, 99 ou 100 nucléotides. A cet égard, il convient de noter que ces définitions s’appliquent à tous les modes de réalisation de l’invention. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne l’aptamère composite électroactif ci-dessus, dans lequel ledit au moins un fragment d’au moins un aptamère donneur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 560 à 570 et 639. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne l’aptamère composite électroactif ci-dessus, dans lequel : ladite séquence nucléotidique électroactive est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 582 et 606 telles que définies ci-dessus, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 609 et 633 telles que définies ci-dessus ; et ledit au moins un fragment d’au moins un aptamère donneur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 560 à 570 et 639. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne l’aptamère composite électroactif ci-dessus, dans lequel l’aptamère composite électroactif est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 571 à 581 et 640 à 642, et les séquences ayant au moins 95 %, de préférence au moins 98 %, d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 571 à 581 et 640 à 642, en particulier ledit aptamère composite électroactif étant choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 571 à 581 et 640 à 642. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne l’aptamère composite électroactif ci-dessus, dans lequel l’aptamère composite électroactif est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 571 à 581 et 640 à 642. De manière générale, un troisième objet de l’Invention concerne un procédé de fabrication d’un aptamère composite électroactif capable de fixer spécifiquement au moins une molécule d’intérêt tel que défini ci-dessus, ledit procédé comprenant au moins une étape de synthèse chimique dudit aptamère composite électroactif, en particulier ladite synthèse chimique comprenant en outre une étape d’incorporation d’une modification par un groupement amine (-NH 2 ) ou thiol (-SH) sur une des extrémités 5’ ou 3’ dudit aptamère composite électroactif ( afin d’en permettre l’immobilisation orientée, par exemple, sur une électrode – cf. infra ). Par « synthèse chimique », on entend la synthèse d'oligonucléotide, c’est-à-dire la synthèse chimique de fragments relativement courts d'acide nucléique avec une structure définie. Bien connue, cette technique est largement utilisée dans les laboratoires ou est externalisée à des sociétés spécialisées dans la synthèse chimique ( e.g. Microsynth). Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne le procédé de fabrication d’un aptamère composite électroactif ci-dessus, ledit procédé comprenant en amont de la synthèse chimique dudit aptamère composite électroactif une étape de conception et de modélisation de sa structure secondaire au moyen notamment de l’application DNA folding disponible sur le serveur Mfold de l’ University of Albany (Zuker M. Mfold web server for nucleic acid folding and hybridization prediction . Nucleic Acids Res. 2003 Jul 1;31(13):3406-15.) comprenant au moins les étapes : de sélection d’une séquence nucléotidique électroactive parmi les séquences SEQ ID NOs : 582 et 606 telles que définies ci-dessus, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 609 et 633 telles que définies ci-dessus, ladite séquence nucléotidique électroactive ayant une structure secondaire comprenant un anneau central électroactif (1) et cinq tiges-boucles (2), l’électroactivité de l’anneau central électroactif (1) pouvant être déterminée au moyen des méthodes de mesures électrochimiques telle que la voltammétrie cyclique ou la voltammétrie à impulsions différentielles ; de sélection d’au moins un fragment d’au moins un aptamère donneur, la structure secondaire dudit au moins un fragment comprenant une tige-boucle (3) capable de fixer spécifiquement une molécule d’intérêt, la fixation de ladite molécule d’intérêt sur ledit au moins un fragment pouvant être déterminée au moyen des méthodes de mesures électrochimiques telle que la voltammétrie cyclique ou la voltammétrie à impulsions différentielles ; et d’introduction par addition ou substitution dudit au moins un fragment dans ladite séquence nucléotidique électroactive pour fabriquer, modéliser et valider que ledit aptamère composite électroactif possède une structure secondaire comprenant un anneau central électroactif (1’) et au moins cinq tiges-boucles (2’, 3’), et dans lequel : l’électroactivité de l’anneau central électroactif (1’) dudit aptamère composite électroactif est préservée par rapport à celle de l’anneau central électroactif (1) de ladite séquence nucléotidique électroactive, ladite électroactivité pouvant être déterminée au moyen des méthodes de mesures électrochimiques telle que la voltammétrie cyclique ou la voltammétrie à impulsions différentielles ; et la capacité de fixer spécifiquement ladite molécule d’intérêt dudit au moins un fragment dudit aptamère composite électroactif étant préservée par rapport à celle dudit au moins un fragment d’au moins un aptamère donneur, ladite fixation pouvant être déterminée au moyen des méthodes de mesures électrochimiques telle que la voltammétrie cyclique ou la voltammétrie à impulsions différentielles, les étapes a) et b) étant réversibles. Par « modélisation », on entend la prédiction des structures secondaires de l’aptamère composite électroactif de l’invention. Celle-ci, comme mentionnée ci-dessus, est notamment réalisée au moyen notamment de l’application DNA folding disponible sur le serveur Mfold de l’ University of Albany (Zuker M. Mfold web server for nucleic acid folding and hybridization prediction . Nucleic Acids Res. 2003 Jul 1;31(13):3406-15.) en tenant compte des paramètres suivants : concentrations ioniques Na + 100 mM et Mg 2+ 5 mM, température 25°C. Elle peut également être réalisée à l’aide de plateformes en ligne comme OligoAnalyzer™ Tool (Integrated DNA Technologies) ou Nupack (Beckman Institute at Caltech) et l’utilisation de ces deux outils peut être conseillée pour confirmer les résultats de la modélisation. Par « une étape d’introduction par addition ou substitution dudit au moins un fragment dans ladite séquence nucléotidique électroactive », on entend une étape qui consiste à greffer la tige-boucle de l’aptamère donneur capable de fixer une molécule d’intérêt sur la séquence nucléotidique électroactive précédemment choisie. Il s’agit notamment de remplacer les bases de la structure électroactive par les bases du fragment de l’aptamère donneur et de prédire ensuite la structure secondaire de l’oligonucléotide obtenu ( cf. supra ). Ceci se fait comme suit : Les structures tiges-boucles sont remplacées par celles du fragment de l’aptamère donneur et il est possible de remplacer les tiges-boucles individuellement ou conjointement. A noter que l’incorporation dudit fragment de l’aptamère donneur peut imposer de modifier (par ajout, suppression et/ou substitution) des bases à distance de la zone d’incorporation pour conserver la structure secondaire de l’invention ( e.g. aptamère composite électroactif capable de fixer la troponine), c’est-à-dire formée de cinq tiges-boucles attachées à un anneau central électroactif simple brin. Ces modifications concernent des modifications de bases permettant notamment d’éviter des appariements AT, TA, CG et/ou GC non désirés que la modélisation informatique révèlerait si ces modifications n’étaient pas effectuées. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne le procédé de fabrication d’un aptamère composite électroactif ci-dessus, dans lequel ladite séquence nucléotidique électroactive est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 583, 584 et 585, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 610, 611 et 612 telles que définies ci-dessus. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne le procédé de fabrication d’un aptamère composite électroactif ci-dessus, dans lequel ladite séquence nucléotidique électroactive est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 586, 587, 588 et 589, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 613, 614, 615 et 616 telles que définies ci-dessus. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne le procédé de fabrication d’un aptamère composite électroactif ci-dessus, dans lequel ladite séquence nucléotidique électroactive est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 590 et 607, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 617 et 634 telles que définies ci-dessus. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne le procédé de fabrication d’un aptamère composite électroactif ci-dessus, dans lequel ladite séquence nucléotidique électroactive est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 591, 592 et 593, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 618, 619 et 620 telles que définies ci-dessus. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne le procédé de fabrication d’un aptamère composite électroactif ci-dessus, dans lequel ladite séquence nucléotidique électroactive est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 594, 595, 596 et 597, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 621, 622, 623 et 624 telles que définies ci-dessus. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne le procédé de fabrication d’un aptamère composite électroactif ci-dessus, dans lequel ladite séquence nucléotidique électroactive est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 598 et 608 telles que définies ci-dessus, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 625 et 635 telles que définies ci-dessus. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne le procédé de fabrication d’un aptamère composite électroactif ci-dessus, dans lequel ladite séquence nucléotidique électroactive est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 599, 600 et 601, telles que définies ci-dessus et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 626, 627 et 628 telles que définies ci-dessus. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne le procédé de fabrication d’un aptamère composite électroactif ci-dessus, dans lequel ladite séquence nucléotidique électroactive est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 602, 603, 604 et 605, telles que définies ci-dessus et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 629, 630, 631 et 632 telles que définies ci-dessus. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne le procédé de fabrication d’un aptamère composite électroactif ci-dessus, dans lequel ladite séquence nucléotidique électroactive est différente des séquences SEQ ID NOs : 637 et 638. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne le procédé de fabrication d’un aptamère composite électroactif ci-dessus, dans lequel ladite séquence nucléotidique électroactive est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 1 à 31, 63 à 93, 125 à 155, 187 à 217, 249 à 279, 311 à 341, 373 à 403, 435 à 465, à 497 à 527 et 559 ; leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 32 à 62, 94 à 124, 156 à 186, 218 à 248, 280 à 310, 342 à 372, 404 à 434, 466 à 496, 528 à 558 et 636 ; et les séquences ayant au moins 95 %, de préférence au moins 98 %, d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 1 à 559 et 636, en particulier ladite séquence nucléotidique électroactive étant choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 1 à 31, 63 à 93, 125 à 155, 187 à 217, 249 à 279, 311 à 341, 373 à 403, 435 à 465, à 497 à 527 et 559, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 32 à 62, 94 à 124, 156 à 186, 218 à 248, 280 à 310, 342 à 372, 404 à 434, 466 à 496, 528 à 558 et 636. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne le procédé de fabrication d’un aptamère composite électroactif ci-dessus, dans lequel ladite séquence nucléotidique électroactive est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 1 à 31, 63 à 93, 125 à 155, 187 à 217, 249 à 279, 311 à 341, 373 à 403, 435 à 465, à 497 à 527 et 559, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 32 à 62, 94 à 124, 156 à 186, 218 à 248, 280 à 310, 342 à 372, 404 à 434, 466 à 496, 528 à 558 et 636. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne le procédé de fabrication d’un aptamère composite électroactif ci-dessus, dans lequel ladite séquence nucléotidique électroactive est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 1, 32, 63, 149, 187 et 249. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne le procédé de fabrication d’un aptamère composite électroactif ci-dessus, dans lequel l’étape d’introduction c) est réalisée par l’une des méthodes suivantes : substitution ( ou remplacement ) d’au moins une des tiges-boucles (2) de ladite séquence nucléotidique électroactive par la tige-boucle (3) dudit au moins un fragment ; et/ou ajout de la tige-boucle (3) dudit au moins un fragment sur au moins une des tiges-boucles (2) de ladite séquence nucléotidique électroactive, lesdites étapes ci-dessus pouvant être combinées. En particulier, ladite étape d’introduction c) est réalisée au moyen d’une substitution ( ou d’un remplacement ) d’au moins une des tiges-boucles (2) de ladite séquence nucléotidique électroactive par la tige-boucle (3) dudit au moins un fragment d’au moins un aptamère donneur. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne le procédé de fabrication d’un aptamère composite électroactif ci-dessus, comprenant en outre une étape de tests permettant de valider ( de vérifier ) que : l’électroactivité de l’anneau central électroactif (1’) dudit aptamère composite électroactif est préservée par rapport à celle de l’anneau central électroactif (1) de ladite séquence nucléotidique électroactive, ladite électroactivité étant déterminée au moyen des méthodes de mesures électrochimiques telle que la voltammétrie cyclique ou la voltammétrie à impulsions différentielles ; et/ou la capacité de fixer spécifiquement ladite molécule d’intérêt dudit au moins un fragment dudit aptamère composite électroactif étant préservée par rapport à celle dudit au moins un fragment d’au moins un aptamère donneur, ladite fixation étant déterminée au moyen des méthodes de mesures électrochimiques telle que la voltammétrie cyclique ou la voltammétrie à impulsions différentielles. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne le procédé de fabrication d’un aptamère composite électroactif ci-dessus, comprenant en outre une étape de test permettant de valider ( de vérifier ) que l’électroactivité de l’anneau central électroactif (1’) dudit aptamère composite électroactif est préservée par rapport à celle de l’anneau central électroactif (1) de ladite séquence nucléotidique électroactive, ladite électroactivité étant déterminée au moyen des méthodes de mesures électrochimiques telle que la voltammétrie cyclique ou la voltammétrie à impulsions différentielles. En particulier, ce test est réalisé au moyen d’un test de voltammétrie cyclique où sont réalisés 2 cycles de voltammétrie cyclique entre -0,4 V et +0,6 V vs. Ag/AgCl à une vitesse de 50 mV/sec à l’aide notamment d’une station électrochimique de type Autolab PGSTAT100 potentiostat/galvanostat (EcoChimie, Netherlands), et l’observation d’un pic anodique entre 0,1 V et 0,2 V confirme l’existence d’une électroactivité intrinsèque de l’anneau central de l’aptamère composite électroactif de l’invention. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne le procédé de fabrication d’un aptamère composite électroactif ci-dessus, comprenant en outre une étape de test permettant de valider ( de vérifier ) que la capacité de fixer spécifiquement ladite molécule d’intérêt dudit au moins un fragment dudit aptamère composite électroactif étant préservée par rapport à celle dudit au moins un fragment d’au moins un aptamère donneur, ladite fixation étant déterminée au moyen des méthodes de mesures électrochimiques telle que la voltammétrie cyclique ou la voltammétrie à impulsions différentielles. En particulier, ce test est réalisé au moyen d’un test de voltammétrie cyclique où sont réalisés 2 cycles de voltammétrie cyclique entre -0,4 V et +0,6 V vs. Ag/AgCl à une vitesse de 50 mV/sec à l’aide notamment d’une station électrochimique de type Autolab PGSTAT100 potentiostat/galvanostat (EcoChimie, Netherlands), et l’observation d’une perte de signal entre l’aptamère composite électroactif de l’invention en absence de la molécule d’intérêt pour laquelle il est censé avoir une affinité et celui en présence de cette molécule d’intérêt confirme que la greffe du fragment d’au moins un aptamère donneur capable de fixer cette molécule d’intérêt sur une séquence nucléotidique électroactive de l’invention permet de conserver son affinité pour ladite molécule d’intérêt. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne le procédé de fabrication d’un aptamère composite électroactif ci-dessus, dans lequel ledit au moins un aptamère donneur cible spécifiquement une molécule d’intérêt choisie parmi : un antibiotique (pénicillines, quinolones, macrolides, etc .), un biomarqueur (maladies cardiovasculaires, cancer, maladie neurodégénératives, maladie auto-immune, etc. ), une hormone, un médicament, un polluant anthropique (pesticides, insecticides, fongicides, herbicides, etc .), une protéine et une toxine (fongiques, microbiennes, algales, etc. ). Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne le procédé de fabrication d’un aptamère composite électroactif ci-dessus, dans lequel ledit au moins un aptamère donneur cible spécifiquement une molécule d’intérêt choisie parmi : la métronidazole A, la tétracycline, l’estradiol A, le bisphénol A, la saxitoxine et la troponine. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne le procédé de fabrication d’un aptamère composite électroactif ci-dessus, dans lequel ledit au moins un fragment d’au moins un aptamère donneur comprend de 10 à 100 nucléotides, en particulier de 10 à 50 nucléotides. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne le procédé de fabrication d’un aptamère composite électroactif ci-dessus, dans lequel ledit au moins un fragment d’au moins un aptamère donneur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 560 à 570 et 639. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne le procédé de fabrication d’un aptamère composite électroactif ci-dessus, dans lequel : ladite séquence nucléotidique électroactive est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 582 et 606 telles que définies ci-dessus, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 609 et 633 telles que définies ci-dessus ; et ledit au moins un fragment d’au moins un aptamère donneur est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 560 à 570 et 639. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne le procédé de fabrication d’un aptamère composite électroactif ci-dessus, dans lequel l’aptamère composite électroactif est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 571 à 581 et 640 à 642, et les séquences ayant au moins 95 %, de préférence au moins 98 %, d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 571 à 581 et 640 à 642, en particulier ledit aptamère composite électroactif étant choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 571 à 581 et 640 à 642. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne le procédé de fabrication d’un aptamère composite électroactif ci-dessus, dans lequel l’aptamère composite électroactif est choisi parmi les séquences SEQ ID NOs : 571 à 581 et 640 à 642. De manière générale, un autre objet de l’Invention concerne l’utilisation d’un aptamère composite électroactif selon l’invention pour la détection d’au moins une molécule d’intérêt ( susceptible d’être ciblée par ledit aptamère composite électroactif selon l’invention ), en particulier au moins une molécule d’intérêt choisie parmi : un antibiotique (pénicillines, quinolones, macrolides, etc .), un biomarqueur (maladies cardiovasculaires, cancer, maladie neurodégénératives, maladie auto-immune, etc. ), une hormone, un médicament, un polluant anthropique (pesticides, insecticides, fongicides, herbicides, etc .), une protéine et une toxine (fongiques, microbiennes, algales, etc. ). Comme discuté précédemment, les inventeurs ont été capable de développer des aptamères composites électroactifs monofonctionnels ( i.e. affinité pour une seule molécule d’intérêt) ou multifonctionnels ( i.e. affinité pour au moins deux molécules d’intérêt). Cela explique pourquoi l’utilisation ci-dessus concerne la détection d’au moins une molécule d’intérêt. Ainsi, dans l’hypothèse d’un aptamère composite électroactif monofonctionnel il sera question de la détection d’une molécule d’intérêt. Et dans l’hypothèse d’un aptamère composite électroactif bifonctionnel, trifonctionnel, tétrafonctionnel voire pentafonctionnel, il sera question de la détection respective de deux, trois, voire quatre molécules d’intérêt. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne l’utilisation ci-dessus d’un aptamère composite électroactif selon l’invention pour la détection d’au moins une molécule d’intérêt choisie parmi : un antibiotique (pénicillines, quinolones, macrolides, etc .), un biomarqueur (maladies cardiovasculaires, cancer, maladie neurodégénératives, maladie auto-immune, etc .), une hormone, un médicament, un polluant anthropique (pesticides, insecticides, fongicides, herbicides, etc .), une protéine et une toxine (fongiques, microbiennes, algales, etc .). Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne l’utilisation ci-dessus d’un aptamère composite électroactif selon l’invention pour la détection d’au moins une molécule d’intérêt choisie parmi : la métronidazole A, la tétracycline, l’estradiol A, le bisphénol A, la saxitoxine et la troponine. De manière générale, un autre objet de l’Invention concerne l’utilisation d’un aptamère composite électroactif selon l’invention pour la fabrication d’un aptacapteur électroactif capable de détecter spécifiquement au moins une molécule d’intérêt, ledit aptacapteur électroactif comprenant un aptamère composite électroactif selon l’invention immobilisé : sur une bille magnétique ; ou sur la surface d’une électrode (sérigraphiée), en particulier une électrode de carbone ou une électrode d’or, ( ladite au moins une molécule d’intérêt étant susceptible d’être ciblée par ledit aptamère composite électroactif selon l’invention ). Par « aptacapteur composite électroactif », on entend le support (bille magnétique, électrodes, etc. ) sur lequel est immobilisé l’aptacapteur composite électroactif de l’invention et lequel permet de mettre en œuvre les utilisations et les procédés de l’Invention. Aussi, de manière générale, un autre objet de l’Invention concerne un aptacapteur électroactif capable de détecter spécifiquement au moins une molécule d’intérêt, ledit aptacapteur électroactif comprenant un aptamère composite électroactif selon l’invention immobilisé : sur une bille magnétique ; ou sur la surface d’une électrode (sérigraphiée), en particulier une électrode de carbone ou une électrode d’or, ( ladite au moins une molécule d’intérêt étant susceptible d’être ciblée par ledit aptamère composite électroactif selon l’invention ). De manière générale, un autre objet de l’Invention concerne un procédé de fabrication d’un aptacapteur électroactif tel que défini ci-dessus capable de détecter spécifiquement au moins une molécule d’intérêt, ledit procédé comprenant au moins une étape d’immobilisation d’un aptamère composite électroactif selon l’invention sur : sur une bille magnétique ; ou sur la surface d’une électrode (sérigraphiée), en particulier une électrode de carbone ou une électrode d’or, ( ladite au moins une molécule d’intérêt étant susceptible d’être ciblée par ledit aptamère composite électroactif selon l’invention ). Ceci est notamment rendu possible grâce à l’’incorporation d’une modification par un groupement amine (-NH 2 ) ou thiol (-SH) sur une des extrémités 5’ ou 3’ dudit aptamère composite électroactif lorsque celui-ci est synthétisé chimiquement. Par « incorporation d’une modification par un groupement amine (-NH 2 ) sur une des extrémités 5’ ou 3’ dudit aptamère composite électroactif », on entend la modification qui permet notamment le couplage ED/NHS d’aptamères aminés (NH2) sur des électrodes sérigraphiées de carbone. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne donc le procédé de fabrication d’un aptamère composite électroactif de l’invention, dans lequel ladite synthèse chimique comprend en outre une étape d’incorporation d’une modification par un groupement amine (-NH2) sur une des extrémités 5’ ou 3’ dudit aptamère composite électroactif. Et selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne le procédé de fabrication d’un aptacapteur électroactif ci-dessus, dans lequel l’aptamère composite électroactif de l’invention comprend une modification par un groupement amine (-NH 2 ) sur une de ses extrémités 5’ ou 3’. Par « incorporation d’une modification par un groupement thiol (-SH) sur une des extrémités 5’ ou 3’ dudit aptamère composite électroactif », on entend la modification qui permet notamment l’autoassemblage d’aptamères thiolés (SH) sur des électrodes sérigraphiées d’or. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne donc le procédé de fabrication d’un aptamère composite électroactif de l’invention, dans lequel ladite synthèse chimique comprend en outre une étape d’incorporation d’une modification par un groupement thiol (-SH) sur une des extrémités 5’ ou 3’ dudit aptamère composite électroactif. Et selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne le procédé de fabrication d’un aptacapteur électroactif ci-dessus, dans lequel l’aptamère composite électroactif de l’invention comprend une modification par un groupement thiol (-SH) sur une de ses extrémités 5’ ou 3’. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne le procédé de fabrication d’un aptacapteur électroactif ci-dessus, ledit procédé comprenant au moins une étape d’immobilisation d’un aptamère composite électroactif selon l’invention sur une bille magnétique. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne le procédé de fabrication d’un aptacapteur électroactif ci-dessus, ledit procédé comprenant au moins une étape d’immobilisation d’un aptamère composite électroactif selon l’invention sur une bille magnétique, ladite immobilisation comprenant au moins les étapes suivantes : a) la mise en suspension de billes magnétiques pré-activées dans un tampon de pH compris de 4,5 à 6,5 ; b) le lavage desdites billes magnétiques pré-activées ; c) l’ajout d’un mélange de 1-Ethyl-3-[3-dimethylami- nopropyl]-carbodiimide hydrochloride (EDC) et de N-hydroxysuccinimide (NHS) ; et d) l’ajout d’une solution comprenant l’aptamère composite électroactif selon l’invention modifié à l’extrémité 5’ ou 3’ avec une groupement amine. Ici, l’EDC réagit avec les acides carboxyliques de surface des billes magnétiques pour former un intermédiaire O-acylisourée instable qui réagit immédiatement avec le NHS pour former un ester réactif plus stable. L’ajout de la solution d’aptamères aptamères composites électroactifs de l’invention porteurs d’un groupement amine terminal permet alors l’établissement de liaisons amide stables entre les billes magnétiques et les aptamères composites électroactifs de l’invention. Cette immobilisation peut être réalisée non limitativement de la façon suivante : Des billes magnétiques de 1 μm de diamètre activées avec des groupements carboxyliques de type Dynabeads MyOne™ (Invitrogen) sont utilisées pour l’immobilisation de l’aptamère composite électroactif de l’invention. Ces billes sont fournies en suspension aqueuse, elles possèdent une surface hydrophile qui garantit une faible liaison non spécifique et d'excellentes capacités de dispersion. 200 μL de ces billes sont mises en suspension dans un microtube contenant 800 μL de Tampon MES (2-(N-morpholino) ethanesulfonic acid hydrate) 0,1 M pH 5,5. Le microtube est ensuite placé sur un support magnétique, permettant l’élimination du tampon par simple retournement. Les billes retenues dans le tube sont ensuite traitées avec 1 mL de mélange d’EDC à 0,1 M et de NHS à 25 mM dans le tampon MES 0,1 M et maintenues sous agitation pendant 2h, puis la solution est éliminée par retournement sur le support magnétique. L’immobilisation des aptamères composites électroactifs de l’invention est réalisée en ajoutant aux billes 1 mL de solution d’aptamères composites électroactifs de l’invention à 1 μM et en agitant la suspension obtenue pendant 4h. La quantité d’aptamères composites électroactifs de l’invention immobilisée a pu être estimée en mesurant l’absorbance à 260 nm de la solution d’aptamères composites électroactifs de l’invention avant et après incubation avec les billes activées. Les billes modifiées sont ensuite incubées en présence d’un tampon Tris-HCl 20 mM pH 7,6 afin de procéder au blocage des sites actifs potentiellement libres. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne le procédé de fabrication d’un aptacapteur électroactif ci-dessus, ledit procédé comprenant au moins une étape d’immobilisation d’un aptamère composite électroactif selon l’invention sur la surface d’une électrode, en particulier une électrode sérigraphiée. En particulier, l’invention concerne le procédé de fabrication d’un aptacapteur électroactif ci-dessus, ledit procédé comprenant au moins une étape d’immobilisation d’un aptamère composite électroactif selon l’invention sur la surface d’une électrode de carbone. En particulier, l’invention concerne également le procédé de fabrication d’un aptacapteur électroactif ci-dessus, ledit procédé comprenant au moins une étape d’immobilisation d’un aptamère composite électroactif selon l’invention sur la surface d’une électrode de carbone, ladite immobilisation comprenant au moins les étapes suivantes : a) le traitement électrochimique préalable d’une électrode de carbone en milieu acide ; b) l’électrogreffage de groupements benzoates ou phenylcarboxylates sur ladite électrode de carbone ; c) l’ajout d’un mélange de 1-Ethyl-3-[3-dimethylami- nopropyl]-carbodiimide hydrochloride (EDC) et de N-hydroxysuccinimide (NHS) ; et d) l’ajout d’une solution comprenant l’aptamère composite électroactif selon l’invention modifié à l’extrémité 5’ ou 3’ avec un groupement amine. Ici, les groupements acides carboxyliques des groupements benzoates ou phenylcarboxylates sont activés par le mélange EDC/NHS afin de générer des esters réactifs. L’ajout de la solution d’aptamères aptamères composites électroactifs de l’invention porteurs d’un groupement amine terminal permet alors l’établissement de liaisons amide stables entre l’électrode de carbone et les aptamères composites électroactifs de l’invention. Cette immobilisation peut être réalisée non limitativement de la façon suivante : Un type de capteurs sérigraphiés constitués de systèmes à 3 électrodes est utilisé. Il est constitué de capteurs sérigraphiés comprenant une électrode de travail en carbone (diamètre 4 mm, pâte de carbone LOCTITE® EDAG 423SS), une contre-électrode en carbone (piste incurvée de 16 mm x 1,5 mm, LOCTITE® EDAG 423SS) et une électrode de référence Ag/AgCl (16 mm x 1,5 mm, Electrodag 6037SS). Avant immobilisation, l’électrode de travail est prétraitée en voltammétrie linéaire en appliquant cinq cycles entre 1,0 et -1,5 V vs Ag/AgCl dans H 2 SO 4 0,5 M contenant 0,1 M de KCl, ce qui permet d’obtenir des lots d’électrodes présentant des caractéristiques de surface homogènes et régulières. La surface des électrodes de travail est ensuite activée afin de créer des groupements de surface sur lesquels l’aptamère composite électroactif de l’invention peut être immobilisé. Cette activation est réalisée en utilisant un sel de diazonium obtenu en mélangeant sous agitation pendant 5 minutes du nitrite de sodium (NaN0 2 ) à 2 mM et de l’acide 4-aminophénylacétique à 2 mM dans une solution de HCl à 0,5 M. Un volume de 100 µL du produit obtenu est alors déposé sur la surface de l’électrode de travail, et la génération électrochimique de groupements phénylacétique de surface est réalisée in situ par voltammétrie linéaire en balayant le potentiel de 0,4 à -1 V vs Ag/AgCl. Les électrodes sont ensuite lavées à l’eau distillée et les groupes carboxyliques ainsi obtenus sont ensuite activés en déposant sur l'électrode de travail 50 µL d’une solution de tampon MES 0,1 M pH 5,5 contenant 100 mM de 1-éthyl-3-[3-(diméthylamino)propyl]carbodiimide (EDC) et 25 mM de N-hydroxysuccinimide (NHS) pour un temps d’incubation de 120 min. Après rinçage à l’eau distillée, 20 µL de solution d’aptamère composite électroactif de l’invention (aminé en 5’ ou en 3’) de concentration 1 µM sont déposés sur l’électrode de travail et laissés à incuber pendant 4 h afin de permettre l’immobilisation. L’électrode est alors rincée avec le tampon PBS, puis les sites activés résiduels sont bloqués par incubation pendant 60 min avec 50 µL de solution d’éthanolamine 1 M pH 11. Enfin, l’électrode est rincée avec le tampon phosphate 0,1 M, pH 7,4 et peut être utilisée. En particulier, l’invention concerne également le procédé de fabrication d’un aptacapteur électroactif ci-dessus, ledit procédé comprenant au moins une étape d’immobilisation d’un aptamère composite électroactif selon l’invention sur la surface d’une électrode d’or. En particulier, l’invention concerne également le procédé de fabrication d’un aptacapteur électroactif ci-dessus, ledit procédé comprenant au moins une étape d’immobilisation d’un aptamère composite électroactif selon l’invention sur la surface d’une électrode d’or, ladite immobilisation comprenant au moins les étapes suivantes : a) l’ajout d’une solution comprenant l’aptamère composite électroactif selon l’invention modifié à l’extrémité 5’ ou 3’ avec un groupement thiol sur une électrode d’or ; et b) l’application d’un potentiel suffisant pendant une durée suffisante permettant la réduction d’éventuels ponts disulfures entre l’électrode d’or et l’aptamère composite électroactif selon l’invention modifié à l’extrémité 5’ ou 3’ avec une groupement thiol. Ici, l’immobilisation orientée de l’aptamère composite électroactif de l’invention sur une électrode d’or est donc basée sur l’établissement de liaisons covalentes spontanées entre les groupements thiols (SH) terminaux des aptamères et l’or (Au) constitutif du matériau d’électrode. Aucun réactif de couplage n’est nécessaire pour cette réaction. Cette immobilisation peut être réalisée non limitativement de la façon suivante : Un type de capteurs sérigraphiés constitués de systèmes à 3 électrodes est utilisé. Il est constitué notamment d’électrodes sérigraphiées commercialisées par la société DropSens-Metrohm (Asturias, Espagne) comportant une électrode de travail en or. Elles ont été réalisées avec des aptamères composites électroactifs modifiés en 5’ par un groupement thiol (SH). L’immobilisation, réalisée notamment avec des aptamères composites électroactifs de l’invention modifiés en 5’ par un groupement thiol (SH), est effectuée en déposant 80 μL de solution d’aptamère sur l’électrode de travail en or. L’application d’un potentiel de -1,2 V pendant 300 secondes permet la réduction d’éventuels ponts disulfures et ainsi favorise la fixation des aptamères composites électroactifs de l’invention sur la surface d’or. Après quoi, les électrodes sont rincées avec un tampon. De manière générale, un autre objet de l’Invention concerne l’utilisation d’un aptacapteur électroactif tel que défini ci-dessus pour détecter au moins une molécule d’intérêt ( susceptible d’être ciblée par ledit aptamère composite électroactif selon l’invention ), en particulier au moins une molécule d’intérêt choisie parmi : un antibiotique (pénicillines, quinolones, macrolides, etc .), un biomarqueur (maladies cardiovasculaires, cancer, maladie neurodégénératives, maladie auto-immune, etc. ), une hormone, un médicament, un polluant anthropique (pesticides, insecticides, fongicides, herbicides, etc .), une protéine et une toxine (fongiques, microbiennes, algales, etc. ). Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne l’utilisation ci-dessus d’un aptacapteur électroactif tel que défini ci-dessus pour détecter au moins une molécule d’intérêt choisie parmi : un antibiotique (pénicillines, quinolones, macrolides, etc .), un biomarqueur (maladies cardiovasculaires, cancer, maladie neurodégénératives, maladie auto-immune, etc. ), une hormone, un médicament, un polluant anthropique (pesticides, insecticides, fongicides, herbicides, etc .), une protéine et une toxine (fongiques, microbiennes, algales, etc. ). Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne l’utilisation ci-dessus d’un aptacapteur électroactif tel que défini ci-dessus pour détecter au moins une molécule d’intérêt choisie parmi : la métronidazole A, la tétracycline, l’estradiol A, le bisphénol A, la saxitoxine et la troponine. De manière générale, un autre objet de l’Invention concerne un procédé de détection d’au moins une molécule d’intérêt ( susceptible d’être ciblée par ledit aptamère composite électroactif selon l’invention ), ledit procédé comprenant au moins la mise en œuvre de l’aptamère composite électroactif selon l’invention ou de l’aptacapteur électroactif tel que défini ci-dessus, en particulier ladite au moins une molécule d’intérêt étant choisie parmi : un antibiotique (pénicillines, quinolones, macrolides, etc .), un biomarqueur (maladies cardiovasculaires, cancer, maladie neurodégénératives, maladie auto-immune, etc. ), une hormone, un médicament, un polluant anthropique (pesticides, insecticides, fongicides, herbicides, etc .), une protéine et une toxine (fongiques, microbiennes, algales, etc. ). Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne le procédé de détection d’au moins une molécule d’intérêt ci-dessus, dans lequel ladite au moins une molécule d’intérêt est choisie parmi : un antibiotique (pénicillines, quinolones, macrolides, etc .), un biomarqueur (maladies cardiovasculaires, cancer, maladie neurodégénératives, maladie auto-immune, etc. ), une hormone, un médicament, un polluant anthropique (pesticides, insecticides, fongicides, herbicides, etc .), une protéine et une toxine (fongiques, microbiennes, algales, etc. ) Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne le procédé de détection d’au moins une molécule d’intérêt ci-dessus, dans lequel ladite au moins une molécule d’intérêt est choisie parmi : la métronidazole A, la tétracycline, l’estradiol A, le bisphénol A, la saxitoxine et la troponine. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne le procédé de détection d’au moins une molécule d’intérêt ci-dessus comprenant au moins les étapes suivantes : a) l’ajout d’une solution « contrôle » ne comprenant pas ladite au moins une molécule d’intérêt sur l’aptamère composite électroactif selon l’invention ou sur l’aptacapteur électroactif tel que défini ci-dessus et la mesure du signal électrique de l’aptamère composite électroactif selon l’invention ou de l’aptacapteur électroactif tel que défini ci-dessus ; b) l’ajout d’un échantillon à tester susceptible de contenir ladite au moins une molécule d’intérêt sur l’aptamère composite électroactif selon l’invention ou sur l’aptacapteur électroactif tel que défini ci-dessus et la mesure du signal électrique de l’aptamère composite électroactif selon l’invention ou de l’aptacapteur électroactif tel que défini ci-dessus ; c) la comparaison du signal mesuré à l’étape a) au signal mesuré à l’étape b), dans lequel un changement (une diminution) du signal mesuré à l’étape b) par rapport au signal mesuré à l’étape a) indique la présence de ladite au moins une molécule d’intérêt dans l’échantillon à tester. Aussi, on comprend que le principe général de la détection d’au moins une molécule d’intérêt repose sur la mesure du courant généré par l’aptamère composite de l’invention en absence et en présence de ladite au moins une molécule d’intérêt. La fixation de celle-ci par (sur) l’aptamère composite de l’invention se traduit par une diminution de l’intensité du courant mesuré. Cette diminution étant proportionnelle à la concentration de ladite au moins une molécule d’intérêt dans l’échantillon testé, il est possible de la quantifier si une courbe étalon a été réalisée en parallèle. Par « échantillon à tester », on entend de manière non limitative des échantillons biologiques (sang, urine, salive, etc. ), des échantillons environnementaux (eaux de source, eaux souterraines, eaux de surface), des échantillons agro-industriels liquides (lait, jus de fruits, vins et autres boissons fermentées) ou solides après extraction (céréales, cacao, café, thé, et autres matrices végétales ou animales) dans lesquelles la détection d’au moins une molécule d'intérêt est envisagée, par exemple, soit pour diagnostiquer une pathologie, soit pour mettre en évidence une pollution, soit pour mettre en évidence une contamination alimentaire ou attester de la conformité d’un produit. Ce procédé peut être réalisé non limitativement de la façon suivante : Après avoir préparé ou s’être procuré l’aptacapteur électroactif de l’invention sur lequel est immobilisé l’aptacapteur composite électroactif de l’invention, lequel est capable de reconnaître et de fixer ladite au moins une molécule d’intérêt, 100 µL d’une solution contrôle ( i.e. ne contenant pas ladite au moins une molécule d’intérêt) sont déposés sur la surface de l’aptacapteur électroactif, et le signal est mesuré en réalisant 2 cycles de voltammétrie cyclique entre -0,4 et +0,6 V vs. Ag/AgCl à une vitesse de 50 mV/sec. La présence d’un pic anodique observé entre 0,1 et 0,2 V confirme la présence d’une électroactivité intrinsèque de l’aptacapteur composite électroactif de l’invention, et l’intensité de pic est considérée comme le signal de l’aptacapteur. Ensuite, 100 µL d’une solution test ( i.e. pouvant contenir ladite au moins une molécule d’intérêt) sont déposés sur la surface de l’aptacapteur électroactif, et le signal est mesuré en réalisant 2 cycles de voltammétrie cyclique entre -0,4 et +0,6 V vs. Ag/AgCl à une vitesse de 50 mV/sec. L’observation d’un changement du signal de l’aptacapteur électroactif valide la reconnaissance (la fixation) et donc la détection de ladite au moins une molécule d’intérêt dans la solution test par l’aptacapteur composite électroactif de l’invention. Ce changement de signal est par la suite ensuite exprimé comme suit : où I test représente l’intensité du signal mesuré avec une solution test et I contrôle représente l’intensité du signal mesuré avec une solution contrôle. A l’inverse, l’absence de changement du signal de l’aptacapteur indique que la solution test ne comprend pas ladite au moins une molécule d’intérêt. De manière générale, un autre objet de l’Invention concerne une banque de séquences nucléotidiques électroactives, ladite banque comprenant les séquences SEQ ID NOs : 582 et 606 telles que définies ci-dessus, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 609 et 633 telles que définies ci-dessus, lesquelles séquences et séquences miroirs ont une structure secondaire comprenant un anneau central électroactif (1) et cinq tiges-boucles (2), l’électroactivité de l’anneau central électroactif (1) pouvant être déterminée au moyen des méthodes de mesures électrochimiques telle que la voltammétrie cyclique ou la voltammétrie à impulsions différentielles. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne la banque ci-dessus, ladite banque comprenant les séquences SEQ ID NOs : 583, 584 et 585, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 610, 611 et 612 telles que définies ci-dessus. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne la banque ci-dessus, ladite banque comprenant les séquences SEQ ID NOs : 586, 587, 588 et 589, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 613, 614, 615 et 616 telles que définies ci-dessus. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne la banque ci-dessus, ladite banque comprenant les séquences SEQ ID NOs : 590 et 607, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 617 et 634 telles que définies ci-dessus. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne la banque ci-dessus, ladite banque comprenant les séquences SEQ ID NOs : 591, 592 et 593, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 618, 619 et 620 telles que définies ci-dessus. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne la banque ci-dessus, ladite banque comprenant les séquences SEQ ID NOs : 594, 595, 596 et 597, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 621, 622, 623 et 624 telles que définies ci-dessus. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne la banque ci-dessus, ladite banque comprenant les séquences SEQ ID NOs : 598 et 608 telles que définies ci-dessus, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 625 et 635 telles que définies ci-dessus. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne la banque ci-dessus, ladite banque comprenant les séquences SEQ ID NOs : 599, 600 et 601, telles que définies ci-dessus et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 626, 627 et 628 telles que définies ci-dessus. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne la banque ci-dessus, ladite banque comprenant les séquences SEQ ID NOs : 602, 603, 604 et 605, telles que définies ci-dessus et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 629, 630, 631 et 632 telles que définies ci-dessus. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne la banque ci-dessus, ladite banque ne comprenant ni la séquence SEQ ID NO : 637, ni la séquence SEQ ID NO : 638. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne la banque ci-dessus, ladite banque comprenant les séquences SEQ ID NOs : 1 à 31, 63 à 93, 125 à 155, 187 à 217, 249 à 279, 311 à 341, 373 à 403, 435 à 465, à 497 à 527 et 559 ; leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 32 à 62, 94 à 124, 156 à 186, 218 à 248, 280 à 310, 342 à 372, 404 à 434, 466 à 496, 528 à 558 et 636 ; et les séquences ayant au moins 95 %, de préférence au moins 98 %, d’identité avec les séquences SEQ ID NOs : 1 à 559 et 636, en particulier ladite banque comprenant les séquences SEQ ID NOs : 1 à 31, 63 à 93, 125 à 155, 187 à 217, 249 à 279, 311 à 341, 373 à 403, 435 à 465, à 497 à 527 et 559, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 32 à 62, 94 à 124, 156 à 186, 218 à 248, 280 à 310, 342 à 372, 404 à 434, 466 à 496, 528 à 558 et 636. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne la banque ci-dessus, ladite banque comprenant les séquences SEQ ID NOs : 1 à 31, 63 à 93, 125 à 155, 187 à 217, 249 à 279, 311 à 341, 373 à 403, 435 à 465, à 497 à 527 et 559, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 32 à 62, 94 à 124, 156 à 186, 218 à 248, 280 à 310, 342 à 372, 404 à 434, 466 à 496, 528 à 558 et 636. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne la banque ci-dessus, ladite banque comprenant les séquences SEQ ID NOs : 1 à 31, 63 à 93, 125 à 155, 187 à 217, 249 à 279, 311 à 341, 373 à 403, 435 à 465, à 497 à 527 et 559, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 32 à 62, 94 à 124, 156 à 186, 218 à 248, 280 à 310, 342 à 372, 404 à 434, 466 à 496, 528 à 558 et 636. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne la banque ci-dessus, ladite banque comprenant les séquences SEQ ID NOs : 1, 32, 63, 149, 187 et 249. A tout égard, il convient de noter que les différents aspects de l’invention, ainsi que les différents modes de réalisation de celle-ci sont interdépendants. Ces derniers peuvent donc être combinés entre eux pour obtenir des aspects et/ou des modes de réalisation préférés de l’invention non explicitement décrits. Ceci est également valable pour l’ensemble des définitions fourni dans la présente description, lequel s’applique à tous les aspects de l’invention et ses modes de réalisation. En outre, la présente invention est illustrée, sans toutefois s’y limiter, par les Figures et Exemples suivants. LISTE DES FIGURES La représente schématiquement la conception de l’aptamère composite électroactif capable de fixer la métronidazole de séquence SEQ ID NO : 571 obtenu grâce à la substitution de la quatrième tige-boucle de la séquence nucléotidique électroactive de séquence SEQ ID NO : 1 par la tige-boucle de séquence SEQ ID NO : 560 de l’aptamère donneur capable de fixer la métronidazole. La représente la modélisation de la structure secondaire des séquences nucléotidiques électroactives de séquences SEQ ID NOs : 32, 63, 149, 187 et 249. Elles disposent toutes d’un anneau central électroactif et de cinq tiges-boucles. La représente la modélisation de la structure secondaire des séquences nucléotidiques électroactives de séquences SEQ ID NOs : 311, 373, 497 et 559. Elles disposent toutes d’un anneau central électroactif et de cinq tiges-boucles. La montre le voltammogramme cyclique et l’intensité de pic anodique pour l’aptacapteur électroactif sur lequel est immobilisé l’aptamère composite électroactif anti-TPN-5 (SEQ ID NO : 581). L’intensité de pic est considérée comme le signal de l’aptacapteur électroactif. La montre une courbe de calibration réalisée en utilisant l’aptamère composite électroactif anti-TPN-5 (SEQ ID NO : 581) et en présence de la troponine à des concentrations comprises de 0,5 nM à 10 nM nM. EXEMPLES EXEMPLE No. 1 : Electroactivité intrinsèque de la séquence nucléotidique électroactive de l’Invention 1 . MATERIELS & METHODES 1.1 . Conception et Modélisation La prédiction des structures secondaires de la séquence conçue a été effectuée en utilisation l’application « DNA folding » disponible sur le serveur Mfold ( University of Albany, State University of New-York, USA ) (Zuker M. Mfold web server for nucleic acid folding and hybridization prediction . Nucleic Acids Res. 2003 Jul 1;31(13):3406-15. doi: 10.1093/nar/gkg595. PMID: 12824337; PMCID: PMC169194.). Elle a été réalisée en tenant compte des paramètres suivants : concentrations ioniques Na + 100 mM et Mg 2+ 5 mM, température 25°C. 1.2 . Synthèse chimique Après la conception informatique de la séquence nucléotidique électroactive, la séquence obtenue a été produite (Microsynth AG, Suisse) avec une modification par un groupement amine sur une des extrémités de la séquence (5’ou 3’), afin d’en permettre l’immobilisation orientée. 1.3 . Immobilisation de la séquence nucléotidique électroactive sur une électrode de carbone Avant immobilisation, l’électrode de travail a été prétraitée en voltammétrie linéaire en appliquant cinq cycles entre 1,0 et -1,5 V vs Ag/AgCl dans H 2 SO 4 0,5 M contenant 0,1 M de KCl, ce qui permet d’obtenir des lots d’électrodes présentant des caractéristiques de surface homogènes et régulières. La surface des électrodes de travail a ensuite été activée afin de créer des groupements de surface sur lesquels la séquence nucléotidique électroactive de l’invention peut être immobilisée. Cette activation a été réalisée en utilisant un sel de diazonium obtenu en mélangeant sous agitation pendant 5 minutes du nitrite de sodium (NaN0 2 ) à 2 mM et de l’acide 4-aminophénylacétique à 2 mM dans une solution de HCl à 0,5 M. Un volume de 100 µL du produit obtenu a alors été déposé sur la surface de l’électrode de travail, et la génération électrochimique de groupements phénylacétique de surface a été réalisée in situ par voltammétrie linéaire en balayant le potentiel de 0,4 à -1 V vs Ag/AgCl. Les électrodes ont ensuite été lavées à l’eau distillée et les groupes carboxyliques ainsi obtenus ont ensuite été activés en déposant sur l'électrode de travail 50 µL d’une solution de tampon MES 0,1 M pH 5,5 contenant 100 mM de 1-éthyl-3-[3-(diméthylamino)propyl]carbodiimide (EDC) et 25 mM de N-hydroxysuccinimide (NHS) pour un temps d’incubation de 120 min. Après rinçage à l’eau distillée, 20 µL de solution de la séquence nucléotidique électroactive de l’invention (aminé en 5’ ou en 3’) de concentration 1 µM ont été déposés sur l’électrode de travail et laissés à incuber pendant 4 h afin de permettre l’immobilisation. L’électrode a été ensuite rincée avec le tampon PBS, puis les sites activés résiduels ont été bloqués par incubation pendant 60 min avec 50 µL de solution d’éthanolamine 1 M pH 11. Enfin, l’électrode a été rincée avec le tampon phosphate 0,1M, pH 7,4 et a pu être utilisée. 1.4 . Voltammétrie cyclique A l’aide d’une station électrochimique de type Autolab PGSTAT100 potentiostat/galvanostat (EcoChimie, Netherlands), ont été réalisés 2 cycles de voltammétrie cyclique entre -0,4 V et +0,6 V vs. Ag/AgCl à une vitesse de 50 mV/sec. 2 . RESULTATS Après avoir conçu et modélisé la séquence SEQ ID NO : 1, celle-ci a montré qu’elle possède 5 tiges-boucles organisées autour d’un anneau central ( ), lequel, en voltammétrie cyclique, a montré posséder une électroactivité intrinsèque caractéristique. En effet, il a été observé un pic anodique singulier entre 0,1 V et 0,2 V. A partir de cette séquence nucléotidique électroactive de séquence SEQ ID NO : 1, ont été conçues et modélisées les séquences SEQ ID NOs : 2 à 559 et 636, et l’électroactivité des séquences SEQ ID NOs : 32, 63, 149, 187 et 249 a été mesurée de la même manière. Pour chacune d’entre elles, la même structure secondaire a été modélisée (1 anneau central électroactif + 5 tiges-boucles) ( ) et il a également été mesuré le même pic anodique entre 0,1 V et 0,2 V (Tableau 1). Etonnamment, le signal électrochimique mesuré de la séquence miroir SEQ ID NO : 32 a été davantage significatif que celui de la séquence SEQ ID NO : 1 dont elle est le miroir. Séquences nucléotidiques électroactives (SEQ ID NO) Signal initial (µA) 1 34 ± 6,3 32 68 ± 8,2 63 23 ± 3,5 149 15 ± 1,4 187 18 ± 1,6 249 24 ± 5,3 Tableau 1 . Mesures de l’activité électrochimique des séquences nucléotidiques électroactives Avec les séquences SEQ ID NOs : 311, 373, 497 et 559 ayant la même structure secondaire que celle de la séquence SEQ ID NO : 1 ( ), ce pic anodique entre 0,1 V et 0,2 V s’observe également. Ces données ont finalement permis d’affirmer que le remplacement des bases qui constituent les tiges-boucles et/ou la modification d’autre base n’affecte pas l’activité électrochimique intrinsèque d’oligonucléotide obtenu, à condition que la structure secondaire de ce dernier donne la même forme de cinq tige-boucles et un anneau central à simple brin sur laquelle toutes les tige-boucles s’associent. Des séquences consensus ont donc pu être générées. EXEMPLE No. 2 : Conception d’un aptamère composite électroactif 1 . MATERIELS & METHODES 1.1 . Conception d’un aptamère composite électroactif Souhaitant tirer profit de l’électroactivité intrinsèque des séquences nucléotidiques électroactives qu’ils ont conçu, les inventeurs ont alors réalisé la mise au point d’aptamères composites électroactifs issus du remplacement (= de la substitution) de tiges-boucles par des structures issues d’autres aptamères donneurs présentant des propriétés de reconnaissance pour une molécule d’intérêt. Concrètement, celle-ci est passée par trois étapes principales : La première a consisté à sélectionner une séquence nucléotidique électroactive de l’invention parmi celles décrites dans la banque de l’invention, à savoir les séquences SEQ ID NOs : 582 et 606 telles que définies ci-dessus, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 609 et 633 telles que définies ci-dessus La deuxième a consisté à sélectionner un aptamère donneur ayant une affinité spécifique pour une molécule d’intérêt (= sa cible). Cette étape a été facilitée lorsque l’aptamère a déjà été décrit dans la littérature scientifique, mais il a aussi été possible de procéder à une sélection in vitro en utilisant par exemple la méthode SELEX ( Systematic Evolution of Ligands by EXponential enrichment ). La prédiction des structures secondaires de l’aptamère obtenu est ensuite nécessaire et elle peut donner lieu à des structures simples ou très complexes. A noter qu’il n’est possible de réaliser un aptamère composite électroactif que si la structure de l’aptamère donneur est constituée d’une à trois tiges-boucles associées séparées par 2 à 4 nucléotides. Des variations dans la longueur de la tige ou la taille de la boucle, ainsi que la présence de structures plus élaborées ( e.g la présence de tiges-boucles secondaires sur les tiges-boucles principales) n’écartent toutefois pas la possibilité de réaliser un aptamère composite à partir de l’aptamère donneur. Dans le cas de structures complexes, il est alors parfois important de réaliser des études de troncage de l’aptamère donneur afin de déterminer la partie impliquée dans la reconnaissance de la molécule d’intérêt, qui fera l’objet du greffage. La troisième a consisté à greffer l’aptamère donneur (ou un fragment de cet aptamère donneur) sur la séquence nucléotidique électroactive précédemment choisie. Il s’agit de remplacer les bases de la structure électroactive par les bases de l’aptamère donneur et de prédire ensuite la structure secondaire de l’oligonucléotide obtenu ( cf. supra, Exemple No. 1, point 1.1. ). Ceci se fait comme suit : Les structures tiges-boucles sont remplacées par celles de l’aptamère donneur (ou un fragment de cet aptamère donneur) et il est possible de remplacer les tiges-boucles individuellement ou conjointement. A noter que l’incorporation de l’aptamère donneur (ou un fragment de cet aptamère donneur) peut imposer de modifier des bases à distance de la zone d’incorporation. L’oligonucléotide obtenu n’a été retenu comme candidat pour passer à l’étape de validation que si la structure secondaire de ce dernier est du même type que celle de la séquence nucléotidique électroactive, c’est-à-dire formée de cinq tiges-boucles attachées à un anneau central simple brin. 1.2 . Validation de l’aptamère composite modélisé Après sa conception informatique, l’oligonucléotide obtenu la séquence obtenue a été produit (Microsynth AG, Suisse) et y est incorporé une modification par un groupement amine sur une des extrémités 5’ ou 3’ de sa séquence, afin d’en permettre l’immobilisation orientée. L’oligonucléotide ainsi obtenu n’est considéré comme aptamère composite électroactif que s’il répond à deux exigences prouvées expérimentalement : la première est de présenter une électroactivité intrinsèque mesurable lorsqu’il est immobilisé à la surface d’une électrode ; et la seconde est de conserver son affinité pour sa cible (pour laquelle l’aptamère donneur a été sélectionné), et que la reconnaissance de la cible par cet oligonucléotide donne lieu à un changement de signal électrochimique mesurable. 1.2.1 . Traitement de l’oligonucléotide et électrodes Une solution d’oligonucléotide a été préparée dans un tampon phosphate 0,1 M à pH 11. La solution a ensuite été chauffée pendant 5 min à 95°C puis refroidie 5 min à 4°C, et laissée à température ambiante (compris de 20°C à 24°C) au moins 5 min avant de son dépôt sur la surface d’électrode. Dans ce travail, deux types de capteurs sérigraphiés constitués de systèmes à 3 électrodes ont été utilisés : des capteurs commercialisés par DropSens (Ref : 220 AT) comportant une électrode de travail en or ; et des capteurs sérigraphiés au laboratoire à l’aide d’une machine à sérigraphier semi-automatique DEK248 (DEK, Miribel, France), et constitués d’une électrode de travail en carbone (diamètre 4 mm, pâte de carbone LOCTITE® EDAG 423SS), d’une contre-électrode en carbone (piste incurvée de 16 mm x 1,5 mm, LOCTITE® EDAG 423SS), et d’une électrode de référence Ag/AgCl (16 mm x 1,5 mm, Electrodag 6037SS). Avant immobilisation, l’électrode de travail a été prétraitée en voltammétrie linéaire en appliquant cinq cycles entre 1,0 et -1,5 V vs Ag/AgCl dans H 2 SO 4 0,5 M contenant 0,1 M de KCl. Ce traitement permet d’obtenir des lots d’électrodes présentant des caractéristiques de surface homogènes et régulières. Toutes les mesures électrochimiques ont été réalisées à l’aide d’une station électrochimique de type Autolab PGSTAT100 potentiostat/galvanostat (EcoChimie, Netherlands). 1.2.2 . Immobilisation des oligonucléotides sur l’électrode 1.2.2.1 . Activation de la surface par un agent de couplage La surface des électrodes de travail a été activée afin de créer des groupements de surface sur lesquels l’oligonucléotide peut être immobilisé. Cette activation a été réalisée en utilisant un sel de diazonium obtenu en mélangeant sous agitation pendant 5 minutes du nitrite de sodium (NaN0 2 ) à 2 mM et de l’acide 4-aminophénylacétique à 2 mM dans une solution de HCl à 0,5 M. Un volume de 100 µL du produit obtenu a alors été déposé sur la surface de l’électrode de travail, et la génération électrochimique de groupements phénylacétique de surface a été réalisée in situ par voltammétrie linéaire en balayant le potentiel de 0,4 à -1 V vs Ag/AgCl. Les électrodes ont ensuite été lavées à l’eau distillée. Les groupes carboxyliques ainsi obtenus ont ensuite été activés en déposant sur l'électrode de travail 50 µL d’une solution de tampon MES 0,1 M pH 5,5 contenant 100 mM de 1-éthyl-3-[3-(diméthylamino)propyl]carbodiimide (EDC) et 25 mM de N-hydroxysuccinimide (NHS) pour un temps d’incubation de 120 min. 1.2.2.2 . Immobilisation des oligonucléotides Après rinçage à l’eau distillée, 20 µL de solution d’oligonucléotide (aminé en 5’ ou en 3’) de concentration 1 µM ont été déposés sur l’électrode de travail et laissés à incuber pendant 4 h afin de permettre l’immobilisation. 1.2.2.3 . Blocage des sites actifs résiduels (non fixés par l’oligonucléotide). L’électrode a ensuite été rincée avec le tampon PBS. Les sites activés résiduels ont ensuite été bloqués par incubation pendant 60 min avec 50 µL de solution d’éthanolamine 1 M pH 11. L’électrode a ensuite été rincée avec le tampon phosphate 0,1M, pH 7,4. 1.2.3 . Mesure de l’électroactivité intrinsèque de l’oligonucléotide immobilisé 100 µL de d’une solution tampons ont été déposés sur la surface de l’électrode sur laquelle l’oligonucléotide est immobilisé, et le signal a été mesuré en réalisant 2 cycles de voltammétrie cyclique entre -0,4 et +0,6 V vs. Ag/AgCl à une vitesse de 50 mV/sec. La présence d’un pic anodique observé entre 0,1 et 0,2 V confirme la présence d’une électroactivité intrinsèque de l’oligonucléotide immobilisé et cela signifie que l’exigence 1 a été remplie. 1.2.4 . Validation de l’affinité de l’oligonucléotide immobilisé et détection de sa cible 100 µL de la solution contenant la cible à 0M (témoin) et à différentes concentrations ont été déposés sur la surface de l’électrode pour un temps d’incubation de 20 min. Ensuite le signal électrochimique a été mesuré comme décrit ci-dessus et l’observation d’un changement du signal valide la reconnaissance de la cible par l’oligonucléotide immobilisé. La réponse a ensuite été exprimée comme suit : Finalement, l’observation d’un changement du signal signifie que l’exigence 2 a été remplie et que l’oligonucléotide conçu ci-dessus est un aptamère composite électroactif au sens de l’invention qui peut servir à fabriquer des aptacapteur électroactif permettant la détection de molécule d’intérêt. 1.2.5 . Tampons utilisés Différents oligonucléotides ont été conçus pour fixer une molécule d’intérêt choisie parmi : la métronidazole A, la tétracycline, l’estradiol A, le bisphénol A, la saxitoxine et la troponine. Les mesures électrochimiques ont été réalisées avec les tampons suivants, lesquels dépendent de la nature de la cible, qui correspondent aux conditions optimales qui assurent l’affinité aptamère-cible : Détection de la saxitoxine : tampon phosphate 10 mM pH 7,4 contenant 140 mM de NaCl, 2,7 mM de KCl et 0,05% Tween-20 ; Détection de la tétracycline : tampon Tris-HCl 20 mM pH 7,4 contenant 100 mM de NaCl, 5 mM de KCl, 2 mM de MgCl2, 1 mM de CaCl2 et 0,02% de Tween 20 ; Détection du métronidazole A : tampon Tris-HCl 50 mM pH 7,4 contenant 100 mM de NaCl, 5 de mM KCl et 1 mM MgCl 2 ; Détection de l’estradiol A : tampon Tris-HCl 2 mM pH 7,5 contenant 10 mM de NaCl, 5 mM de KCl, 0,2 mM de MgCl 2 , 0,1 mM de CaCl 2 , et 5% éthanol ; Détection du bisphénol A : tampon Tris-HCl 0,02 mM pH 8 contenant 100 mM de NaCl, 40 mM de KCl, 20 mM de MgCl 2 et 0,01% SDS ; et Détection de la troponine : tampon phosphate 20 mM pH 8 contenant 100 mM de NaCl, 5 mM de KCl, 2 mM de MgCl 2 , 1 mM de CaCl 2 . Ces tampons dit de « sélection » ont été utilisés pour toutes les étapes ci-dessus et pour la mesure des signaux électrochimiques. 2 . RESULTATS 2.1 . Conception des aptamères composites électroactifs pour la détection de : la tétracycline, le métronidazole, la saxitoxine, l’estradiol, le bisphénol A et la troponine 2.1.1 . Design d’un aptamère composite électroactif responsable de la reconnaissance de la tétracycline L’aptamère donneur a été choisi suite aux travaux des Inventeurs, sa séquence est la suivante : 5’-TTGGGTTGGTCCC-3’ (SEQ ID NO : 639). Sa structure secondaire est constituée de 13 bases dont 11 forment une tige-boucle précédée par 2 thymines. L’aptamère composite électroactif a été conçu en remplaçant la structure tige-boucle numéro 4 de la séquence nucléotidique électroactive SEQ ID NO : 1 par les bases de l’aptamère donneur. La séquence de l’aptamère composite électroactif obtenu est la séquence SEQ ID NO : 640 : 5’-CGTACAAATTTTTTTGCTAGAAATTTTTTTCAGGAAATTTTTTTC TTGGGTTGGTCCC ACTGCAAATTTTTTTG -3’. Les structures secondaires des deux aptamères « donneur » et « composite électroactif » sont présentées dans le tableau 2. 2.1.2 . Design d’un aptamère composite électroactif responsable de la reconnaissance du métronidazole Deux aptamères composites électroactifs ont été conçus à partir de deux séquences décrites dans l’art antérieur et présentant une affinité pour le métronidazole. La première est : 5’-CTGTTTGGTAGCAG-3’ (SEQ ID NO : 560), sa structure secondaire est constituée d’une tige-boucle, et l’aptamère composite électroactif a été conçu en remplaçant la structure tige-boucle numéro 4 de la séquence nucléotidique électroactive SEQ ID NO : 1 par les bases de l’aptamère donneur. La séquence de l’aptamère composite électroactif obtenu est la séquence SEQ ID NO : 571 : 5’-CGTACAAATTTTTTTGCTAGAAATTTTTTTCAGGAAAATTTTTTCTT CTGTTTGGTAGGCAG ACTGCAAATTTTTTTG-3’. La seconde est : 5’-ATCCCTGCAGTTTGGTAGGGTGCGAGCAACATCAGGCACCTGCAGG-3’ (SEQ ID NO : 561), sa structure secondaire est constituée d’une structure tige-boucle principale associée une tige-boucle secondaire. L’aptamère composite électroactif a été conçu en remplaçant la structure tige-boucle numéro 2 de la séquence nucléotidique électroactive SEQ ID NO : 1 par les bases de l’aptamère donneur. La séquence de l’aptamère composite électroactif obtenu est la séquence SEQ ID NO : 572 : 5’-CGTACAAATTTTTTTGATC CCTGCAGTTTGGTAGGGTGCGAGCAACATCAGG CACCTGCAGGAGGAAATTTTTTTCTTGAAATTTTTTTCACTGCAAATTTTTTTG-3’. Les structures secondaires des deux aptamères donneurs et des deux aptamères composites électroactifs obtenus sont présentées dans le tableau 2. 2.1.3 . Design d’un aptamère composite électroactif responsable de la reconnaissance de la saxitoxine L’aptamère donneur a été sélectionné à partir d’une séquence décrite dans l’art antérieur et présentant une affinité pour la saxitoxine. La structure secondaire de cet aptamère donneur est constituée de deux structures tiges-boucles entourées de courtes parties linéaires. Les bases probablement impliquées dans la reconnaissance de la saxitoxine sont indiquées en gras : 5’-TTGAGGGTCGCATC CC GTGGAA AC AGGTTC AT TG-3’ (SEQ ID NO : 565). L’aptamère composite électroactif a été conçu en remplaçant les 32 premières bases de la séquence nucléotidique électroactive SEQ ID NO : 1 par les 32 premières bases de l’aptamère donneur. La séquence de l’aptamère composite électroactif obtenu est la séquence SEQ ID NO : 576 : 5’- TTGAGGGTCGCATC CC GTGGAA AC AGGTTC AT GAAATTTTTTTCTTGAAATTTTTTTCACTGCAAATTTTTTTG-3’. Les structures secondaires des deux aptamères « donneur » et « composite électroactif » sont présentées dans le tableau 2. 2.1.4 . Design d’un aptamère composite électroactif responsable de la reconnaissance de l’estradiol L’aptamère donneur a été sélectionné à partir d’une séquence décrite dans l’art antérieur et présentant une affinité pour l’estradiol : 5’-GCCGTTTGGGCCCAAGTTCGGC-3’ (SEQ ID NO : 562). La structure secondaire est constituée d’une tige-boucle secondaire associée à une tige-boucle principale. L’aptamère composite électroactif a été conçu en remplaçant les bases de la tige-boucle 4 de la séquence nucléotidique électroactive SEQ ID NO : 1 par cette séquence. La séquence de l’aptamère composite électroactif obtenu est la séquence SEQ ID NO : 573 : 5’-CGTACAAATTTTTTTGCTAGAAATTTTTTTCAGGAAATTTTTTTCTT GCCGTTTGGGCCCAAGTTCGGC ACTGCAAATTTTTTTG-3’ Les structures secondaires des deux aptamères « donneur » et « composite électroactif » sont présentées dans le tableau 2. 2.1.5 . Design d’un aptamère composite électroactif responsable de la reconnaissance du bisphénol A L’aptamère donneur a été sélectionné à partir d’une séquence décrite dans l’art antérieur et présentant une affinité pour le bisphénol A : 5’-TTTTTTTTTTGGATAGCGGGTTCC-3’ (SEQ ID NO : 563). La structure secondaire de cet aptamère donneur est constituée de 24 bases dont 14 forment une tige-boucle positionnée à l’extrémité d’une partie linéaire composée de 10 bases de thymine. L’aptamère composite électroactif a été conçu en remplaçant les bases de la tige-boucle 4 de la séquence nucléotidique électroactive SEQ ID NO : 1 par la structure tige-boucle de l’aptamère donneur. La séquence de l’aptamère composite électroactif obtenu est la séquence SEQ ID NO : 574 : 5’-CGTACAAATTTTTTTGCTAGAAATTTTTTTCAGGAAATTTTTTTC TTGGATAGCGGGTTCC ACTGCAAATTTTTTTG-3’ Les structures secondaires des deux aptamères « donneur » et « composite électroactif » sont présentées dans le tableau 2. 2.1.6 . Design d’un aptamère composite électroactif responsable de la reconnaissance de la troponine L’aptamère donneur a été sélectionné à partir d’une séquence décrite dans l’art antérieur et présentant une affinité pour la troponine. La structure secondaire de cet aptamère donneur est constituée de 40 bases dont 30 forment une tige-boucle positionnée à l’intérieur d’un segment simple brin. Les bases probablement impliquées dans la reconnaissance de la cible sont indiquées en gras : 5’-CGTG CAGTACGCCAACC TTT C TCA TGCGCTGC CCCTC TTA-3’ (SEQ ID NO : 570) Plusieurs aptamères composites électroactifs ont été conçus en remplaçant certaines structures tiges-boucles de la séquence nucléotidique électroactive SEQ ID NO : 1 par tout ou partie de cet aptamère donneur. Les 5 séquences utilisées à partir de cet aptamère donneur sont les suivantes : Fragment 1 (SEQ ID NO : 566) : CAGTACGCCAACCTTTCTCATGCGCTGC (tige-boucle seule) ; Fragment 2 (SEQ ID NO : 567) : CAGTACGCCAACCTTTCTCATGCGCTGCCCCT (tige-boucle suivie des 4 bases CCCT) ; Fragment 3 (SEQ ID NO : 568) : CAGTACGCCAACCTTTCTCATGCGCTGCCCCTC (tige-boucle suivie des 5 bases CCCTC) ; Fragment 4 (SEQ ID NO : 569) : CGTGCAGTACGCCAACCTTTCTCATGCGCTGCCCC (tige-boucle précédée des quatre bases CGTG et suivie des 3 bases CCC) ; et Fragment 5 (SEQ ID NO : 570) : CGTGCAGTACGCCAACCTTTCTCATGCGCTGCCCCTCTTA (séquence complète). Les 5 aptamères composites électroactifs obtenus à partir de cet aptamère donneur et ses fragments sont les suivants : Le 1 er aptamère composite électroactif a été conçu en remplaçant la tige-boucle numéro 4 de la séquence nucléotidique électroactive SEQ ID NO : 1 par le fragment 1 : 5’- CGTACAAATTTTTTTGCTAGAAATTTTTTTCAGGAAATTTTTTTCTTG CAGTACGCCAACCTTTCTCATGCGCTGC ACTGCAAATTTTTTTG-3’ (SEQ ID NO : 577). Le 2 ème aptamère composite électroactif a été conçu en remplaçant la tige-boucle numéro 4 de la séquence nucléotidique électroactive SEQ ID NO : 1 par le fragment 2. Cette modification impose de substituer les bases ACTG en positions 77-80 de l’aptamère anti-troponine ainsi obtenu par les bases CCCT en positions 33-36 : 5’-CGTACAAATTTTTTTGCTAGAAATTTTTTTCAGGAAATTTTTTTCTTG CAGTACGCCAACCTTTCTCATGCGCTGC CCCTCAAATTTTTTTG-3’ (SEQ ID NO : 578). Le 3 ème aptamère composite électroactif a été conçu en remplaçant la tige-boucle numéro 4 de la séquence nucléotidique électroactive SEQ ID NO : 1 par le fragment 3. Cette modification impose de substituer les bases ACTG en positions 77-80 de l’aptamère anti-troponine ainsi obtenu par les bases CCCT en positions 33-36 et d’intégrer un nucléotide C surnuméraire en position 81 : 5’-CGTACAAATTTTTTTGCTAGAAATTTTTTTCAGGAAATTTTTTTCTTG CAGTACGCCAACCTTTCTCATGCGCTGC CCCTCCAAATTTTTTTG-3’ (SEQ ID NO : 579). Le 4 ème aptamère composite électroactif a été conçu en remplaçant la tige-boucle numéro 1 de la séquence nucléotidique électroactive SEQ ID NO : 1 par le fragment 4. Cette modification impose de supprimer le nucléotide A en position 4 de la séquence nucléotidique électroactive, et de remplacer les bases CTA en positions 33, 34 et 35 de l’aptamère anti-troponine ainsi obtenu par CCC : 5’- CGTGCAGTACGCCAACCTTTCTCATGCGCTGC CCCGAAATTTTTTTCAGGAAATTTTTTTCTTGAAATTTTTTTCACTGCAAATTTTTTTG-3’ (SEQ ID NO : 580). Le 5 ème aptamère composite électroactif a été conçu en remplaçant la tige-boucle numéro 2 de la séquence nucléotidique électroactive SEQ ID NO : 1 par le fragment 5. Cette modification impose de substituer les bases CTA en positions 17-19 par CGT et les bases AG (49-50) par CC. La structure tige-boucle numéro 3 de séquence GAAATTTTTTTTC a dû aussi être remplacée par CTCTTAAAAGAG : 5’-CGTACTTTTTTTAAAG CGTGCAGTACGCCAACCTTTCTCATGCGCTGCCCCTCTTA AAAGAGTTGAAATTTTTTTCACTGCAAATTTTTTTG-3’ (SEQ ID NO : 581). Les structures secondaires des cinq fragments de l’aptamère donneur et des cinq aptamères composites électroactifs sont présentées dans le tableau 2. 2.1.7 . Design d’un aptamère composite électroactif responsable de la reconnaissance de plusieurs cibles 2.1.7.1 . Design d’un aptamère composite électroactif responsable de la reconnaissance de deux antibiotiques : la tétracycline et le métronidazole L’aptamère composite électroactif est conçu en remplaçant deux structures de type tiges-boucles de la séquence nucléotidique électroactive SEQ ID NO : 1 : la tige-boucle numéro 2 de la séquence nucléotidique électroactive est remplacée par l’aptamère donneur reconnaissant le métronidazole : 5’-CTGTTTGGTAGCAG-3’ (SEQ ID NO : 560) ; et la structure tige-boucle numéro 4 de la séquence nucléotidique électroactive par l’aptamère donneur reconnaissant la tétracycline : 5’-GGGTTGGTCCC-3’ (SEQ ID NO : 564). La séquence de l’aptamère composite électroactif bifonctionnel obtenu est la suivante : 5’-CGTAGAAATTTTTTTCCTA CTGTTTGGTAGCAG AGGAAATTTTTTTCTT GGGTTGGTCCC ACTGCAAATTTTTTTG-3’ (SEQ ID NO : 641). La structure secondaire de l’aptamère composite électroactif est présentée dans le tableau 2. 2.1.7.2 . Design d’un aptamère composite électroactif responsable de la reconnaissance de deux perturbateurs endocriniens : le bisphénol A et l’estradiol L’aptamère composite électroactif est conçu en remplaçant deux structures de type tiges-boucles de la séquence nucléotidique électroactive SEQ ID NO : 1 : la structure tige-boucle numéro 1 de la séquence nucléotidique électroactive par l’aptamère donneur présentant une affinité pour l’estradiol : 5’-GCCGTTTGGGCCCAAGTTCGGC-3’ (SEQ ID NO : 562) ; et la structure tige-boucle numéro 4 de la séquence nucléotidique électroactive par l’aptamère donneur présentant une affinité vers le bisphénol A : 5’-GGATAGCGGGTTCC-3’ (SEQ ID NO : 564). La séquence de l’aptamère composite électroactif obtenu est la suivante : 5’-CGTA GCCGTTTGGGCCCAAGTTCGGC CTACAAATTTTTTTGAGGAAATTTTTTTC TTGGATAGCGGGTTCC ACTGCAAATTTTTTTG-3’ (SED ID NO : 642). La structure secondaire de l’aptamère composite électroactif est présentée dans le tableau 2. Molécule cible Structure secondaire de l’aptamère donneur Structure secondaire de l’aptamère composite électroactif Tétracycline (TET) [CHEM 1] SEQ ID NO : 639 Anti-TET [CHEM 2] SEQ ID NO : 640 Métronidazole (MET) [CHEM 3] SEQ ID NO : 560 Anti-MET-1 [CHEM 4] SEQ ID NO : 571 [CHEM 5] SEQ ID NO : 561 Anti-MET-2 [CHEM 6] SEQ ID NO : 572 Estradiol (EST) [CHEM 7] SEQ ID NO : 565 Anti-EST [CHEM 8] SEQ ID NO :576 Bisphénol A (BPA) [CHEM 9] SEQ ID NO : 562 Anti-BPA [CHEM 10] SEQ ID NO : 573 Saxitoxine (SAX) [CHEM 11] SEQ ID NO : 563 Anti-SAX [CHEM 12] SEQ ID NO : 574 Troponine (TPN) [CHEM 13] SEQ ID NO : 566 Anti-TPN-1 [CHEM 14] SEQ ID NO : 577 [CHEM 15] SEQ ID NO : 567 Anti-TPN-2 [CHEM 16] SEQ ID NO : 578 [CHEM 17] SEQ ID NO : 568 Anti-TPN-3 [CHEM 18] SEQ ID NO : 579 [CHEM 19] SEQ ID NO : 569 Anti-TPN-4 [CHEM 20] SEQ ID NO : 580 [CHEM 21] SEQ ID NO : 570 Anti-TPN-5 [CHEM 22] SEQ ID NO : 581 Tétracycline et métronidazole (TET- MET) Anti-TET-MET [CHEM 23] SEQ ID NO : 641 Bisphénol A et estradiol (PBA- EST) Anti-PBA-EST [CHEM 24] SEQ ID NO : 642 Tableau 2 . Structures secondaires des deux aptamères « donneur » et « composite électroactif » 2.2 . Mesures de l’activité électrochimique des aptamères composites électroactifs conçus Parmi les séquences composites conçues et modélisées, 11 séquences composites ont été testées (SEQ ID NOs : 571-574, 576-581 et 640) et toutes ont montré un signal électrochimique intrinsèque une fois immobilisées sur des électrodes. Il s’agit donc bien d’aptamères composites électroactifs . La montre le voltammogramme cyclique et l’intensité de pic anodique pour l’aptacapteur électroactif basé sur l’aptamère composite électroactif anti-TPN-5 (SEQ ID NO : 581). L’intensité de pic a été considérée comme le signal de l’aptacapteur électroactif, et le tableau 3 ci-après présente les signaux de 11 aptacapteurs électroactifs basés sur les 11 aptamères composites électroactifs testées ci-dessus en absence ou en présence de leur molécule cible utilisées à une concentration fixe de 10 nM. Aptamère composite (SEQ ID NO) Signal initial (µA) Signal mesuré après incubation avec la cible à 10 nM (µA) % de diminution Anti-TET (640) 45,2 ± 1,1 40,1 ± 1,0 11,28 Anti-MET-1 (571) 55,4 ± 4,2 46,3 ± 3,8 16,42 Anti-MET-2 (572) 10,2 ± 0,1 9,8 ± 0,1 03,92 Anti-SAX (576) 23,5 ± 0,6 20,3 ± 0,3 13,62 Anti-EST (573) 37,3 ± 2,2 32,2 ± 2,5 13,67 Anti-BPA (574) 32,3 ± 1,5 29,3 ± 4,5 09,29 Anti-TPN-1 (577) 36,4 ± 1,7 33,9 ± 1,5 06,86 Anti-TPN-2 (578) 35,5 ± 2,3 32,1 ± 1,9 09,57 Anti-TPN-3 (579) 31,0 ± 2,1 21,6 ± 1,6 30,32 Anti-TPN-4 (580) 34,5 ± 1,9 31,6 ± 1,8 08,41 Anti-TPN-5 (581) 57,3 ± 4,8 34,4 ± 4,1 39,96 Tableau 3 . Mesures de l’activité électrochimique des aptamères composites électroactifs conçus TET : Tétracycline ; MET : Métronidazole ; SAX : Saxitoxine ; EST : Estradiol ; BPA : Bisphénol A et TPN : Troponine. En présence des molécules cibles des aptamères composites électroactifs, les 11 aptacapteurs électroactifs testés ont montré une diminution du signal (Tableau 3), laquelle indique la fixation des molécules cibles par leurs aptamères composites électroactifs respectifs. Ces aptamères composites électroactifs sont donc fonctionnels et peuvent être utilisés pour détecter leurs molécules cibles dans un échantillon à tester. Par ailleurs, les tests réalisés avec l’aptamère composite électroactif anti-TPN-5 (SEQ ID NO : 581) en utilisant et en présence de la troponine à des concentrations comprises de 0,5 nM à 10 nM ont permis d’établir une courbe de calibration ( ). Il est donc possible d’utiliser l’invention pour quantifier la concentration d’au moins une molécule d’intérêt dans un échantillon à tester. Utilisation d’une séquence nucléotidique électroactive pour la fabrication d’un aptamère composite électroactif capable de cibler spécifiquement au moins une molécule d’intérêt, dans laquelle ladite séquence nucléotidique électroactive : possède une structure secondaire comprenant un anneau central électroactif (1) et cinq tiges-boucles (2), l’électroactivité de l’anneau central électroactif (1) pouvant être déterminée au moyen des méthodes de mesures électrochimiques telle que la voltammétrie cyclique ou la voltammétrie à impulsions différentielles ; et est choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 582 et 606, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 609 et 633, ladite séquence SEQ ID NO : 582 étant représentée par la séquence : HDWWS a N 10-100 S b HWWS c N 10-100 S d WDS e N 10-100 S f WWS g N 10-100 S h WHWDS i N 10-100 S j et sa séquence miroir SEQ ID NO : 609 étant représentée par la séquence : S j N 10-100 S i DWHWS h N 10-100 S g WWS f N 10-100 S e DWS d N 10-100 S c WWHS b N 10-100 S a WWDH, dans lesquelles : H représente les nucléotides A ou C ou T ; D représente les nucléotides A ou G ou T ; W représente les nucléotides A ou T ; S représente les nucléotides C ou G ; N représente les nucléotides A ou C ou G ou T ; et les motifs S a N 10-100 S b , S c N 10-100 S d , S e N 10-100 S f , S g N 10-100 S h , S i N 10-100 S j , S j N 10-100 S i , S h N 10-100 S g , S f N 10-100 S e , S d N 10-100 S c et S b N 10-100 S a représentent un motif tige-boucle comprenant de 10 à 100 nucléotides N où lorsque : S a = C alors S b = G ; S a = G alors S b = C ; S c = C alors S d = G ; S c = G alors S d = C ; S e = C alors S f = G ; S e = G alors S f = C ; S g = C alors S h = G ; S g = G alors S h = C ; S i = C alors S j = G ; et S i = G alors S j = C, et ladite séquence SEQ ID NO : 606 étant représentée par la séquence : CGTAW a N 10-100 W b CTAW c N 10-100 W d AGW e N 10-100 W f TTW g N 10-100 W h ACTGW i N 10-100 W j et sa séquence miroir SEQ ID NO : 633 étant représentée par la séquence : W j N 10-100 W i GTCAW h N 10-100 W g TTW f N 10-100 W e GAW d N 10-100 W c ATCW b N 10-100 W a ATGC dans lesquelles : W représente les nucléotides A ou T ; N représente les nucléotides A ou C ou G ou T ; et les motifs W a N 10-100 W b , W c N 10-100 W d , W e N 10-100 W f , W g N 10-100 W h , W i N 10-100 W j , W j N 10-100 W i , W h N 10-100 W g , W f N 10-100 W e , W d N 10-100 W c et W b N 10-100 W a représentent un motif tige-boucle comprenant de 10 à 100 nucléotides N où lorsque : W a = A alors W b = T ; W a = T alors W b = A ; W c = A alors W d = T ; W c = T alors W d = A ; W e = A alors W f = T ; W e = T alors W f = A ; W g = A alors W h = T ; W g = T alors W h = A ; W i = A alors W j = T ; et W i = T alors W j = A, et dans laquelle ledit aptamère composite électroactif : comprend ladite séquence nucléotidique électroactive dans laquelle a été introduit par addition ou substitution au moins un fragment d’au moins un aptamère donneur, la structure secondaire dudit au moins un fragment comprenant une tige-boucle (3) capable de fixer spécifiquement une molécule d’intérêt, la fixation de ladite molécule d’intérêt sur ledit au moins un fragment pouvant être déterminée au moyen des méthodes de mesures électrochimiques telle que la voltammétrie cyclique ou la voltammétrie à impulsions différentielles ; et possède une structure secondaire comprenant un anneau central électroactif (1’) et au moins cinq tiges-boucles (2’, 3’), l’électroactivité de l’anneau central électroactif (1’) dudit aptamère composite électroactif étant préservée par rapport à celle de l’anneau central électroactif (1) de ladite séquence nucléotidique électroactive, ladite électroactivité pouvant être déterminée au moyen des méthodes de mesures électrochimiques telle que la voltammétrie cyclique ou la voltammétrie à impulsions différentielles ; et la capacité de fixer spécifiquement ladite molécule d’intérêt dudit au moins un fragment dudit aptamère composite électroactif étant préservée par rapport à celle dudit au moins un fragment d’au moins un aptamère donneur, ladite fixation pouvant être déterminée au moyen des méthodes de mesures électrochimiques telle que la voltammétrie cyclique ou la voltammétrie à impulsions différentielles. Aptamère composite électroactif capable de fixer spécifiquement au moins une molécule d’intérêt, ledit aptamère composite électroactif ayant une structure secondaire comprenant un anneau central électroactif (1’) et au moins cinq tiges-boucles (2’, 3’), et comprenant deux éléments : une séquence nucléotidique électroactive choisie parmi les séquences SEQ ID NOs : 582 et 606 telles que définies selon la revendication 1, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 609 et 633 telles que définies selon la revendication 1, ladite séquence nucléotidique électroactive ayant une structure secondaire comprenant un anneau central électroactif (1) et cinq tiges-boucles (2), l’électroactivité de l’anneau central électroactif (1) pouvant être déterminée au moyen des méthodes de mesures électrochimiques telle que la voltammétrie cyclique ou la voltammétrie à impulsions différentielles ; et au moins un fragment d’au moins un aptamère donneur, la structure secondaire dudit au moins un fragment comprenant une tige-boucle (3) capable de fixer spécifiquement une molécule d’intérêt, ledit au moins un fragment ayant été introduit par addition ou substitution dans ladite séquence nucléotidique électroactive, et dans lequel l’électroactivité de l’anneau central électroactif (1’) dudit aptamère composite électroactif est préservée par rapport à celle de l’anneau central électroactif (1) de ladite séquence nucléotidique électroactive, ladite électroactivité pouvant être déterminée au moyen des méthodes de mesures électrochimiques telle que la voltammétrie cyclique ou la voltammétrie à impulsions différentielles, et la capacité de fixer spécifiquement ladite molécule d’intérêt dudit au moins un fragment dudit aptamère composite électroactif étant préservée par rapport à celle dudit au moins un fragment d’au moins un aptamère donneur, ladite fixation pouvant être déterminée au moyen des méthodes de mesures électrochimiques telle que la voltammétrie cyclique ou la voltammétrie à impulsions différentielles. Procédé de fabrication d’un aptamère composite électroactif capable de fixer spécifiquement au moins une molécule d’intérêt selon la revendication 2, ledit procédé comprenant au moins une étape de synthèse chimique dudit aptamère composite électroactif, en particulier ladite synthèse chimique comprenant en outre une étape d’incorporation d’une modification par un groupement amine (-NH 2 ) ou thiol (-SH) sur une des extrémités 5’ ou 3’ dudit aptamère composite électroactif. Utilisation d’un aptamère composite électroactif selon la revendication 2 pour la détection d’au moins une molécule d’intérêt, en particulier au moins une molécule d’intérêt choisie parmi : un antibiotique, un biomarqueur, une hormone, un médicament, un polluant anthropique, une protéine et une toxine. Utilisation d’un aptamère composite électroactif selon la revendication 2 pour la fabrication d’un aptacapteur électroactif capable de détecter spécifiquement au moins une molécule d’intérêt, ledit aptacapteur électroactif comprenant un aptamère composite électroactif selon la revendication 2 immobilisé : sur une bille magnétique ; ou sur la surface d’une électrode, en particulier une électrode de carbone ou une électrode d’or. Aptacapteur électroactif capable de détecter spécifiquement au moins une molécule d’intérêt, ledit aptacapteur électroactif comprenant un aptamère composite électroactif selon la revendication 2 immobilisé : sur une bille magnétique ; ou sur la surface d’une électrode, en particulier une électrode de carbone ou une électrode d’or. Procédé de fabrication d’un aptacapteur électroactif selon la revendication 6 capable de détecter spécifiquement au moins une molécule d’intérêt, ledit procédé comprenant au moins une étape d’immobilisation d’un aptamère composite électroactif selon la revendication 2 sur : sur une bille magnétique ; ou sur la surface d’une électrode, en particulier une électrode de carbone ou une électrode d’or. Utilisation d’un aptacapteur électroactif selon la revendication 6 pour détecter au moins une molécule d’intérêt, en particulier au moins une molécule d’intérêt choisie parmi : un antibiotique, un biomarqueur, une hormone, un médicament, un polluant anthropique, une protéine et une toxine. Procédé de détection d’au moins une molécule d’intérêt, ledit procédé comprenant au moins la mise en œuvre de l’aptamère composite électroactif selon la revendication 2 ou de l’aptacapteur électroactif selon la revendication 6, en particulier ladite au moins une molécule d’intérêt étant choisie parmi : un antibiotique, un biomarqueur, une hormone, un médicament, un polluant anthropique, une protéine et une toxine. Banque de séquences nucléotidiques électroactives, ladite banque comprenant les séquences SEQ ID NOs : 582 et 606 telles que définies selon la revendication 1, et leur séquence miroir respective SEQ ID NOs : 609 et 633 telles que définies selon la revendication 1, lesquelles séquences et séquences miroirs ont une structure secondaire comprenant un anneau central électroactif (1) et cinq tiges-boucles (2), l’électroactivité de l’anneau central électroactif (1) pouvant être déterminée au moyen des méthodes de mesures électrochimiques telle que la voltammétrie cyclique ou la voltammétrie à impulsions différentielles.