Brevet FR3147934A1 — publié le 20241025

La présente invention concerne un procédé de traitement pour la dégradation du glycogène d’une biomasse d’algues rouges unicellulaires (ARU), particulièrement du genre Galdieria, et l’extrait aqueux ainsi obtenu. PROCEDE DE DEGRADATION DU GLYCOGENE PRESENT DANS UNE BIOMASSE DE GALDIERIA DOMAINE DE L'INVENTION La présente invention concerne un procédé de traitement pour la dégradation du glycogène d’une biomasse d’algues rouges unicellulaires (ARU), particulièrement du genre Galdieria, et l’extrait aqueux ainsi obtenu. ARRIERE PLAN DE L'INVENTION Les algues rouges unicellulaires (URA), ou Rhodophytes, se caractérisent par la présence de pigments au sein de leurs cellules. En plus de la chlorophylle et des caroténoïdes, les algues rouges unicellulaires produisent des phycobiliprotéines. Ces pigments naturels issus de la photosynthèse sont divisés en quatre types : les allophycocyanines, les C-phycocyanines, les phycoérythrines et les phycoérythrocyanines. Les phycocyanines présentent des propriétés bénéfiques pour la santé humaine et animale, et sont aujourd’hui utilisées dans de nombreux domaines comme l’industrie pharmaceutique, la cosmétique ou encore l’agroalimentaire. Les microalgues appartenant à la classe des Cyanidiophyceae, et plus précisément aux genres Cyanidioschyzon , Cyanidium et Galdieria , sont particulièrement intéressantes pour la production de phycocyanines. La production des biomasses d’algues rouges unicellulaires est bien connue de l’homme du métier notamment pour la production de molécules d’intérêt, notamment la production de protéines comme les phycocyanines. Des procédés de production et d’extraction desdites phycocyanines sont décrits dans la littérature (WO2017/093345, WO2019/228947, WO2018/178334, WO2020/161280). Cependant, les microalgues de cette classe, notamment du genre Galdieria, sont aussi connues pour avoir le glycogène comme sucre majeur de réserve. Ce glycogène est un polymère de glucoses α-(1 → 4) ramifié par des liaisons α-(1 → 6). Le glycogène de microalgues du genre Galdieria a la particularité de posséder une grande proportion de ces ramifications, à savoir environ de 7 à 18% de glucoses ramifiés distribués aléatoirement le long de la molécule. Cette structure moléculaire confère au glycogène une conformation globulaire le rendant alors soluble dans l’eau (Martinez-Garcia et al., Int J Biol Macromol. (2016) 89:12-8). Pour la préparation d’extraits aqueux de microalgues, tels que d’extraits de phycocyanines de Galdieria sulphuraria, des étapes de filtration peuvent être nécessaires. Le glycogène étant facilement soluble dans l’eau froide, il se retrouve dans la fraction aqueuse avec les composés hydrophiles d’intérêt, comme les phycocyanines. Les filtres utilisés pour la purification des phycocyanines retiennent tout ou partie du glycogène, et augmentent alors la viscosité du rétentat. Cela engendre des contraintes techniques au niveau du procédé, comme des problèmes de montée en pression, de baisse de flux et de colmatage, en particulier avec des membranes de filtration tangentielle. Par ailleurs, si le glycogène n’est pas éliminé, l’extrait préparé comprend beaucoup de glycogène, il est alors visqueux et peu concentré en phycocyanines. Le glycogène est connu pour être résistant à certaines enzymes. Malgré tout, un procédé impliquant l’ajout d’enzymes exogènes adaptées pour sa dégradation a déjà été mis au point (WO2020/144330). Si elle ne peut pas être totalement éliminée et/ou inactivée, une enzyme ajoutée pour la préparation d’un produit alimentaire doit être listée dans sa composition. Une telle substance non éliminable correspond à un additif ou un auxiliaire technologique qui peut poser des difficultés de commercialisation et/ou de formulation. D’autres méthodes de préparation d’extrait aqueux de biomasses d’algues rouges unicellulaires notamment du genre Galdieria ont été décrites dans la littérature (Moon et al., Korean J. Chem. Engl. 2016, 31, 3, pages 490-495). Cependant, ces méthodes restent difficilement applicables à l’échelle industrielle puisqu’elles requièrent soit l’ajout de grandes quantités de sulfate d’ammonium aboutissant à des effluents riches en polluants non souhaitables pour des raisons écologiques et économiques, soit l’utilisation d’instruments très couteux comme des chromatographies, soit un enchainement d’étapes difficile à mettre en œuvre à plus grande échelle que le laboratoire. En outre, aucune de ces méthodes ne permet d’éliminer sélectivement le glycogène présent dans la biomasse ou dans les extraits aqueux de microalgues. Il existe donc un besoin de fournir un procédé permettant de dégrader le glycogène présent dans une biomasse d’algues rouges unicellulaires dont le sucre de réserve principal est le glycogène, en particulier dans une biomasse de microalgues du genre Galdieria, tout en surmontant les problèmes de l’art antérieur, et notamment ceux énoncés précédemment. BREVE DESCRIPTION DE L'INVENTION Selon un premier aspect de l’invention, les inventeurs ont développé un procédé de traitement d’une biomasse d’algues rouges unicellulaires (ARU) du genre Galdieria, ledit procédé de traitement de biomasse d’ARU comprenant les étapes de : a) récolte de la biomasse par séparation du milieu de culture pour l’obtention d’une biomasse brute d’ARU, b) lyse cellulaire de la biomasse brute de l’étape (a) pour obtenir un lysat, c) optionnellement dilution du lysat de l’étape (b) pour obtenir un solubilisât, et d) séparation des insolubles en suspension dans le lysat de l’étape (b) ou le solubilisât de l’étape (c) pour obtenir un clarifiât, le procédé comprenant une étape de dégradation du glycogène par maintien au repos pendant au moins 2 heures de la biomasse brute et/ou du lysat et/ou du solubilisât et/ou du clarifiât durant laquelle le milieu liquide comprenant la glycogène est à pH acide. La présente invention concerne aussi un extrait aqueux susceptible d’être obtenu par un procédé selon l’invention. Avantageusement, le procédé selon la présente invention permet de diminuer voir même de supprimer l’ajout d’enzymes exogènes adaptées pour la dégradation du glycogène donc de diminuer l’ajout de substances devant être qualifiées d’additifs et/ou d’auxiliaires technologiques. Également, le procédé selon l’invention s’applique avec des conditions de durée, température et pH des plus douces au plus drastiques et peut ainsi s’adapter à la stabilité des molécules d’intérêt à extraire. : Concentrations en glucose libre dans des lysats de biomasse de Galdieria sulphuraria au cours du temps à pH 3,75 et à pH 6, à 37 °C sans ajout d’enzymes exogènes (SE : Sans Enzyme) et avec 1% d’enzymes exogènes dans le lysat (E : Enzyme). : Concentrations en glucose libre dans des lysats de biomasse de Galdieria sulphuraria à température ambiante (« amb », i.e. 20°C) en absence d’enzymes exogènes et à différents pH en fonction du temps. : Concentrations de glucose libre dans des lysats de biomasse de Galdieria sulphuraria à pH 3,75 à différentes températures, en présence ou en absence d’enzymes exogènes, en fonction du temps (SE : Sans Enzyme ; E : Enzyme). : Concentrations de glucose libre dans des lysats de biomasse de Galdieria sulphuraria à pH 3,75 à différentes températures, en absence d’enzymes exogènes, en fonction du temps. : Concentrations de glucose libre en fonction du temps dans un lysat et un solubilisât de biomasse de Galdieria sulphuraria à pH 3,75 à une température de 20°C en l’absence d’enzymes exogènes, et dans un lysat de biomasse de Galdieria sulphuraria à pH 3,75 en présence d’enzymes exogènes (SE : Sans Enzyme ; E : Enzyme). DESCRIPTION DETAILLEE DE L'INVENTION Définitions Dans le cadre de la présente invention, le terme « biomasse » désigne un ensemble de cellules de microalgues, préférentiellement produites par fermentation dans un réacteur biologique. Ladite biomasse peut être vue comme une masse d’organismes unicellulaires. La biomasse peut subir différent traitement et être une biomasse brute, une biomasse lysée, une biomasse décongelée et/ou une biomasse séchée. Il est entendu dans le cadre de la présente demande que les propriétés de la biomasse correspondent à la moyenne des propriétés de l’ensemble des cellules constituant ladite biomasse, autrement dit, une biomasse lysée est une biomasse comprenant au moins 50% de cellules lysées par rapport au nombre total de cellules et une biomasse brute peut comprendre des cellules lysées en raison de l’étape de récolte sans être considérée comme une biomasse lysée tant que le nombre de cellules lysées sur le nombre de cellules non lysées reste minoritaire, i.e. inférieur à 50%. L’expression « biomasse brute » désigne une biomasse obtenue après la récolte, i.e. après la récupération du moût de fermentation puis séparation des cellules d’au moins une partie du milieu de culture. L’expression « biomasse lysée » ou « lysat » fait référence à une biomasse de microalgues dans laquelle au moins 50% des cellules sont lysées, préférentiellement au moins 70%, plus préférentiellement dans laquelle au moins 80%, 85%, 90%, 95%, jusqu’à 100% des cellules sont lysées. L’expression « biomasse décongelée » fait référence à une biomasse congelée, possiblement pour des questions de stockage et/ou de transport puis décongelée pour atteindre une température adéquate pour son traitement selon l’invention, notamment une température adaptée à l’étape de dégradation du glycogène de la biomasse selon l’invention. Selon l’invention, l’expression « biomasse séchée » désigne une biomasse de microalgues qui a été séchée selon des méthodes connues de l’homme du métier et dont la teneur en eau par rapport au poids total de la biomasse est inférieure à 10%, préférentiellement inférieur à 7%, plus préférentiellement comprise entre 5% et 1% d’eau. Parmi les méthodes de séchage connues peuvent être citées le séchage naturel à l’air, le séchage par atomisation, le séchage par lit d’air fluidisé, le séchage à l’aide d’un sécheur à rouleaux et la lyophilisation. Le terme « solubilisât » fait référence à une biomasse lysée ou lysat qui a subi une étape de dilution avec une solution aqueuse de pH neutre, acide ou basique. Le terme « clarifiât » correspond à un extrait aqueux obtenu après séparation des insolubles en suspension dans un lysat ou un solubilisât. Le terme « repos » fait référence à une étape pendant laquelle il n’y a pas de modification des propriétés chimiques de la biomasse brute, du lysat, du solubilisât et/ou du clarifiât, par ajout ou extraction d’un ou plusieurs composant(s). Le repos n’exclue pas le fait que la biomasse brute, le lysat, le solubilisât et/ou le clarifiât puissent être mélangés, i.e. brassés, dans des conditions non destructives qui n’affectent pas les propriétés chimiques de la biomasse brute, du lysat, du solubilisât et/ou du clarifiât. L’expression « milieu liquide comprenant le glycogène » décrit le milieu intracellulaire des cellules constituant la biomasse brute et/ou la phase liquide du lysat, du solubilisât et/ou du clarifiât. L’expression « traitement d’une biomasse » fait référence à tout procédé appliqué à une biomasse notamment pour en modifier les propriétés physico-chimiques, en extraire des molécules d’intérêt et les purifier. A noter que les intervalles numériques donnés visent à inclure tous les nombres intermédiaires (par exemple, un intervalle de 1 à 5 comprend notamment 1, 1,5, 2, 2,75, 3, 3,80, 4, 4,32 et 5). A noter que toutes les valeurs numériques données se réfèrent à la valeur réelle donnée ainsi qu’aux approximations de cette valeur estimées à partir de la convention générale selon laquelle le dernier chiffre indiqué correspond à la précision de la mesure. En l'absence de limites d'erreur précises, l'erreur maximale pour le dernier chiffre spécifié doit être estimée selon la convention de l’arrondi. Procédé de traitement selon l’invention Selon un premier aspect, le procédé selon l’invention est un procédé de traitement d’une biomasse d’algues rouges unicellulaires (ARU) du genre Galdieria, ledit procédé de traitement de biomasse d’ARU comprenant les étapes de : a) récolte de la biomasse par séparation du milieu de culture pour l’obtention d’une biomasse brute d’ARU, b) lyse cellulaire de la biomasse brute de l’étape (a) pour obtenir un lysat, c) optionnellement, dilution du lysat de l’étape (b) pour obtenir un solubilisât, et d) séparation des insolubles en suspension dans le lysat de l’étape (b) ou le solubilisât de l’étape (c) pour obtenir un clarifiât, le procédé comprenant une étape de dégradation du glycogène par maintien au repos pendant au moins 2 heures de la biomasse brute et/ou du lysat et/ou du solubilisât, et/ou du clarifiât, durant laquelle le milieu liquide comprenant la glycogène est à pH acide. Idéalement, tout au long du procédé, les conditions de température, durée et de pH sont particulièrement adaptées pour ne pas dégrader les composés d’intérêt dans l’extrait aqueux, par exemple les phycocyanines, tout en favorisant la dégradation du glycogène lors de l’étape de repos. Selon un mode de réalisation, l'étape de dégradation du glycogène se fait sur la biomasse brute. Ce mode de réalisation comprend alors dans l’ordre les étapes de : a) récolte de la biomasse par séparation du milieu de culture pour l’obtention d’une biomasse brute d’ARU, repos pendant au moins 2 heures de la biomasse brute durant lequel le milieu liquide comprenant le glycogène est à pH acide, b) lyse cellulaire de la biomasse brute de l’étape (a) pour obtenir un lysat, c) optionnellement, dilution du lysat de l’étape (b) pour obtenir un solubilisât, d) séparation des insolubles en suspension dans le lysat de l’étape (b) ou le solubilisât de l’étape (c) pour obtenir un clarifiât. Dans ce mode de réalisation, le glycogène est dans le milieu intracellulaire des cellules constituant la biomasse, lequel milieu liquide est à un pH acide. Dans les trois modes de réalisation suivants, après lyse cellulaire, le glycogène se retrouve dans la phase liquide du lysat, puis le cas échéant du solubilisât et du clarifiât. Selon un mode de réalisation préféré, l'étape de dégradation du glycogène se fait sur le lysat. Ce mode de réalisation comprend alors dans l’ordre les étapes de : a) récolte de la biomasse par séparation du milieu de culture pour l’obtention d’une biomasse brute d’ARU, b) lyse cellulaire de la biomasse brute de l’étape (a) pour obtenir un lysat, repos pendant au moins 2 heures du lysat durant lequel le milieu liquide comprenant le glycogène est à pH acide, c) optionnellement, dilution du lysat de l’étape (b) pour obtenir un solubilisât, d) séparation des insolubles en suspension dans le lysat de l’étape (b) ou le solubilisât de l’étape (c) pour obtenir un clarifiât, et optionnellement, une étape d’ajustement du pH de la biomasse brute ou du lysat. Il peut être nécessaire, en tant que besoin, d’ajuster le pH du milieu liquide de la biomasse brute et/ou du lysat pour obtenir le pH acide recherché pour l’étape de repos sur le lysat. Selon un autre mode de réalisation, l'étape de dégradation du glycogène se fait sur le solubilisât. Ce mode de réalisation comprend alors dans l’ordre les étapes de : a) récolte de la biomasse par séparation du milieu de culture pour l’obtention d’une biomasse brute d’ARU, b) lyse cellulaire de la biomasse brute de l’étape (a) pour obtenir un lysat, c) dilution du lysat de l’étape (b) pour obtenir un solubilisât, repos pendant au moins 2 heures du solubilisât durant lequel le milieu liquide comprenant le glycogène est à pH acide, d) séparation des insolubles en suspension dans le solubilisât de l’étape (c) pour obtenir un clarifiât, et optionnellement, une étape d’ajustement du pH de la biomasse brute, du lysat ou du solubilisât. Il peut être nécessaire, en tant que besoin, d’ajuster le pH du milieu liquide de la biomasse brute, du lysat et/ou du solubilisât pour obtenir le pH acide recherché pour l’étape de repos sur le solubilisât. Selon un autre mode de réalisation, l'étape de dégradation du glycogène se fait sur le clarifiât. Ce mode de réalisation comprend alors dans l’ordre les étapes de : a) récolte de la biomasse par séparation du milieu de culture pour l’obtention d’une biomasse brute d’ARU, b) lyse cellulaire de la biomasse brute de l’étape (a) pour obtenir un lysat, c) optionnellement, dilution du lysat de l’étape (b) pour obtenir un solubilisât, d) séparation des insolubles en suspension dans le lysat de l’étape (b) ou le solubilisât de l’étape (c) pour obtenir un clarifiât, repos pendant au moins 2 heures du clarifiât durant lequel le milieu liquide comprenant le glycogène est à pH acide, et optionnellement, une étape d’ajustement du pH de la biomasse brute, du lysat, du solubilisât et/ou du clarifiât. Il peut être nécessaire, en tant que besoin, d’ajuster le pH du milieu liquide de la biomasse brute, du lysat, du solubilisât et/ou du clarifiât pour obtenir le pH acide recherché pour l’étape de repos sur le clarifiât. a ) Récolte de la biomasse La biomasse selon l’invention est une biomasse d’algues rouges unicellulaires (ARU), plus particulièrement une biomasse de microalgues productrices de phycocyanines ayant une teneur élevée en glycogène. Ces microalgues appartiennent à la classe des Cyanidiophyceae incluant les genres Galdieria , Cyanidium et Cyanidioschyzon. Préférentiellement, les microalgues sont du genre Galdieria. Parmi les microalgues du genre Galdieria, on peut notamment citer les espèces Galdieria daedala , Galdieria maxima , Galdieria partita , Galdieria sulphuraria. Préférentiellement, la biomasse selon l’invention est une biomasse de Galdieria sulphuraria. Les procédés de production de biomasse d’algues rouges unicellulaires (ARUs), et en particulier du genre Galdieria, sont bien connus de l’homme du métier. Dans le cadre de la présente invention, la culture des microalgues peut être réalisée par toute technique de culture connue, dans des contenants adaptés à la croissance des microorganismes aussi appelés réacteurs biologiques, bioréacteur ou fermenteur. Selon l’invention, la biomasse d’algues rouges unicellulaires est obtenue à partir de microalgues cultivées de manière industrielle dans des réacteurs de grande capacité, de préférence à obtenir des moûts de fermentation comprenant de grandes densités de microorganismes. Dans le cadre de présente demande, on entend par « grandes densités » une quantité correspondant à plus de 50 g de matière sèche par litre de moût de fermentation, préférentiellement plus de 100 g par litre. Des exemples de cultures d’algues rouges unicellulaires sont décrits dans les demandes de brevet (WO2017/050917, WO2017/050918, WO2017/093345 et WO2019/228947). Il est entendu que l’homme du métier saura déterminer les paramètres et les conditions optimales pour la culture des microorganismes, telles que les conditions de température, éclairage, durée de culture ou encore nature et quantité des nutriments à apporter. Le procédé selon l’invention comprend une étape a) de récolte de la biomasse. Après culture des microorganismes et l’obtention d’une biomasse, celle-ci est récoltée pour obtenir une biomasse brute. La récolte des algues rouges unicellulaires peut être réalisée par toute technique connue de l’homme du métier, notamment par filtration, éventuellement gravimétrique ou sous pression réduite, décantation, précipitation suivie d’une filtration gravimétrique ou encore centrifugation. Le procédé selon l’invention comprend une étape a) de récolte de la biomasse correspondant donc à la récupération du moût de fermentation suivie de la séparation des cellules de la biomasse d’au moins une partie du milieu de culture. Cette étape permet l’obtention d’une biomasse brute. La biomasse brute ainsi récoltée peut en outre subir une étape de lavage, de préférence avec de l’eau, afin d’éliminer certaines impuretés solubles. La biomasse brute obtenue après récolte et optionnellement après un ou plusieurs lavage comprend au moins 70% d’eau, et jusqu’à 90% d’eau, préférentiellement elle comprend de 75 à 88% d’eau. Préférentiellement, la biomasse brute selon l’invention présente une teneur en matière sèche de 5 à 30% en poids par rapport au poids total de la biomasse brute, généralement encore préférentiellement de 10 à 25% en poids, plus préférentiellement de 10 à 20% en poids. Aussi préférentiellement, la biomasse brute selon l’invention présente une concentration en C-phycocyanine comprise entre 3 et 12 %. b ) Lyse cellulaire Le procédé de traitement d’une biomasse d’algues rouge unicellulaires du genre Galdieria selon l’invention comprend une étape b) de lyse cellulaire de la biomasse brute de l’étape a) pour obtenir un lysat. Préférentiellement, l’étape b) de lyse cellulaire est mise en œuvre sur une biomasse brute dont la teneur en matière sèche est de 5 à 30% en poids par rapport au poids total de la biomasse brute, préférentiellement de 10 à 25% en poids, plus préférentiellement de 10 à 20% en poids. Aussi préférentiellement, l’étape b) de lyse cellulaire est mise en œuvre sur une biomasse brute selon l’invention avec une concentration en C-phycocyanine comprise entre 3 et 12 %. La lyse cellulaire peut se faire par tous moyens de lyse connus de l’homme du métier notamment par des moyens enzymatiques, mécaniques, ou chimiques. Dans le cadre de l’invention, préalablement à cette étape b) de lyse, la biomasse brute peut avoir subi une étape de lavage, congélation, décongélation, séchage et/ou réhydratation. Autrement dit, dans le cadre de la présente invention, la biomasse brute peut être notamment une biomasse décongelée et/ou séchée. Dans le cas préféré d’une lyse mécanique, parmi les moyens mécaniques pouvant être employés selon l’invention on citera notamment les broyeurs à billes, les mélangeurs-disperseurs les homogénéisateurs à haute pression, les broyeurs à poche, broyeurs à impact, les ultrasons, ou encore les champs électriques pulsés. Comme dispositifs pour la mise en œuvre de ces méthodes, on fera référence pour le broyeur à billes : Discus-100 de chez Netzsch ou ECM-AP60 de chez WAB,pour l’homogénéisateur à haute pression : Ariete de chez GEA, pour le mélangeur-disperseur : 700-X de chez Silverson, pour le broyeur à broche : Contraplex de chez Hosakawa et pour le broyeur à impact : Condux de chez Netzsch. Préférentiellement, la lyse cellulaire est faite par lyse mécanique, préférentiellement par broyage et encore préférentiellement avec un broyeur à billes. Préférentiellement, le lysat obtenu présente une teneur en matière sèche de 5 à 30% en poids par rapport au poids total du lysat, préférentiellement de 10 à 25% en poids, plus préférentiellement de 10 à 20% en poids. Aussi préférentiellement, le lysat obtenu présente une concentration en C-phycocyanine de 3% à 12% par rapport au poids total de la matière sèche. Cette étape de lyse b) peut être réalisée avant ou après l’étape de dégradation du glycogène, i.e. avant ou après l’étape de repos, préférentiellement avant. c ) Dilution optionnelle du lysat Selon l’invention, la biomasse lysée ou lysat peut optionnellement subir une étape de dilution. Dans le cadre de la présente invention, l’étape de dilution fait référence à l’ajout d’une solution à la biomasse lysée ou lysat pour en diminuer la concentration en matière sèche. La biomasse lysée diluée est alors définie comme un « solubilisât ». Avantageusement, l’étape de dilution se fait via l’ajout d’une solution aqueuse. Dans un mode de réalisation, la solution aqueuse est de l’eau. Préférentiellement, l’étape c) de dilution est mise en œuvre sur le lysat dont la teneur en matière sèche est de 5 à 30% en poids par rapport au poids total du lysat, préférentiellement de 12 à 25% en poids. Aussi préférentiellement, l’étape c) de dilution est mise en œuvre sur le lysat dont la concentration en C-phycocyanine est de 3% à 12% par rapport au poids total de la matière sèche. La solution aqueuse peut comprendre en plus un ou plusieurs composés ajusteurs de pH. On entend par « composés ajusteurs de pH », tout composé organique ou minéral permettant de modifier le pH (agents correcteurs d’acidité, acides, bases, agents neutralisants ou agents tampons). Des exemples de tels composés sont l’acide sulfurique, l’acide acétique, l’acide citrique, l’acide phosphorique, le citrate de sodium, le lactate de potassium, le malate de potassium, le chlorure de sodium, le phosphate disodique et le phosphate potassique. La solution aqueuse présente un pH acide ou basique selon le ou les composés ajusteurs de pH présents dans la solution. Préférentiellement, l’étape c) de dilution de la biomasse lysée ou lysat se fait avec une solution aqueuse de pH inférieur ou égal à 8, notamment compris entre 0 et 6, préférentiellement entre 1 et 6, plus préférentiellement entre 2 et 5. Le pH de la solution aqueuse à ajouter à la biomasse lysée ou lysat peut être d’environ 2, environ 3, environ 4 ou environ 5. Des exemples de solutions acides pouvant être ajoutées à la biomasse lysée sont des solutions comprenant des acides tels que ceux décrits précédemment. Selon le cas, le solubilisât présente un pH proche de la neutralité avec un pH compris entre 6 et 8, un pH compris entre 1 et 6 ou encore un pH compris entre 8 et 14. Préférentiellement, le solubilisât présente un pH inférieur à 7, notamment compris entre 1 et 6, plus préférentiellement compris entre 2 et 5, encore plus préférentiellement compris entre 3 et 4. Préférentiellement, le solubilisât obtenu présente une teneur en matière sèche de 1 à 15% en poids par rapport au poids total du solubilisât, préférentiellement de 3 à 12% en poids, plus préférentiellement de 4 à 8% en poids. Aussi préférentiellement, le solubilisât obtenue selon l’invention présente une concentration en C-phycocyanine de 0,1 à 12 %, préférentiellement 0,5 à 8 %, plus préférentiellement 1 à 7 %. Cette étape c) de dilution peut être réalisée avant ou après l’étape de dégradation du glycogène, i.e. avant ou après l’étape de repos. Préférentiellement, l’étape c) de dilution est effectuée après l’étape de repos. Le procédé selon l’invention comprend ainsi, selon ce mode préféré, dans l’ordre les étapes successives de : a) récolte de la biomasse par séparation du milieu de culture pour l’obtention d’une biomasse brute d’ARU, b) lyse cellulaire de la biomasse brute de l’étape (a) pour obtenir un lysat, repos à pH acide pendant au moins 2 heures du lysat, c) dilution du lysat pour obtenir un solubilisât, et d) séparation des insolubles en suspension dans le solubilisât de l’étape (c) pour obtenir un clarifiât. d ) Séparation des insolubles Dans le cadre du procédé selon l’invention, le lysat ou le solubilisât subit une étape d) de séparation des insolubles en suspension pour obtenir un clarifiât. Cette étape d) de séparation des insolubles peut être réalisée avant ou après l’étape de dégradation du glycogène, i.e. avant ou après l’étape de repos, préférentiellement après l’étape de repos. Dans le cadre de la présente demande, l’étape de séparation d) peut être réalisée avant ou après l’étape c) de dilution lorsqu’elle est présente. L’étape de séparation des insolubles d) du lysat ou solubilisât peut-être réalisée par toutes les méthodes connues de l’homme du métier. On citera en particulier les méthodes de filtration frontale et la centrifugation. Selon l’invention, l’étape d) de séparation des insolubles est mise en œuvre sur un lysat dont la teneur en matière de 5 à 30% en poids par rapport au poids total du lysat, préférentiellement de 10 à 25% en poids, plus préférentiellement 15 à 20% en poids ; ou toujours plus préférentiellement sur un solubilisât dont la teneur en matière sèche est de 1 à 15% en poids par rapport au poids total du solubilisât, préférentiellement de 3 à 12% en poids, plus préférentiellement de 4 à 8% en poids. Préférentiellement, selon l’invention, l’étape d) de séparation des insolubles est mise en œuvre sur un lysat ou un solubilisât de pH inférieur à 7, préférentiellement compris entre 1 et 6, encore préférentiellement compris entre 2 et 5 toujours encore préférentiellement entre 3 et 4. Le clarifiât selon l’invention présente préférentiellement une teneur en matière sèche de 0,1% à 5% en poids par rapport au poids total du clarifiât, préférentiellement de 0,5% à 4% en poids, plus préférentiellement de 1% à 3% en poids. Aussi préférentiellement, le clarifiât selon l’invention présente une concentration en C-phycocyanine de 0,1 à 12 g/L, préférentiellement 0,5 à 8 g/L, plus préférentiellement 1 à 7 g/L. Dégradation du glycogène Le procédé selon l’invention est caractérisé par une étape de dégradation du glycogène par maintien au repos, dite étape de repos, pendant au moins 2 heures de la biomasse brute et/ou du lysat et/ou du solubilisât, et/ou du clarifiât, durant laquelle le milieu liquide comprenant le glycogène est à pH acide. Moment de l’étape de repos Le maintien au repos pendant au moins 2 heures se fait à pH acide, sur la biomasse brute, le lysat, le solubilisât et/ou le clarifiât. En particulier, selon l’invention le maintien au repos peut s’effectuer avant ou après l’étape b) de lyse cellulaire, autrement dit sur la biomasse brute, le lysat, solubilisât et/ou clarifiât. Préférentiellement, l’étape de repos se fait uniquement sur la biomasse brute, le lysat, le solubilisât ou le clarifiât. Selon l’invention, l’étape de repos peut se faire avantageusement sous agitation de la biomasse brute et/ou du lysat et/ou du solubilisât, et/ou du clarifiât. Dans le cas du lysat et/ou du solubilisât, et/ou du clarifiât, l’étape de repos est faite préférentiellement après ajustement du pH pour obtenir le pH acide recherché pour l’étape de repos. Préférentiellement, selon l’invention le maintien au repos s’effectue après l’étape b) de lyse cellulaire, autrement dit, préférentiellement sur le lysat, solubilisât et/ou clarifiât et encore préférentiellement sur le lysat. Préférentiellement, l’étape de repos s’effectue sur un milieu comprenant des cellules lysées, c’est-à-dire sur le lysat de l’étape b) et/ou, le cas échéant, sur le solubilisât de l’étape c). Conditions de l’étape de repos Selon l’invention, l’étape de repos peut se faire sur de la biomasse brute, du lysat, du solubilisât et/ou du clarifiât plongé(e) dans l’obscurité ou exposé à une lumière naturelle ou artificielle. Préférentiellement, l’étape de repos s’effectue sur de la biomasse brute, du lysat, du solubilisât et/ou du clarifiât plongé(e) dans l’obscurité. Selon l’invention, l’étape de repos se fait sur de la biomasse brute, du lysat, du solubilisât et/ou du clarifiât avec ou sans aération. Le « pH acide » du milieu comprenant le glycogène pendant l’étape de repos est défini comme un pH inférieur à 7, notamment compris entre 1 et 6, préférentiellement compris entre 2 et 5, encore préférentiellement compris entre 3 et 4. Pour la biomasse brute, le glycogène est dans le milieu intracellulaire des cellules constituant la biomasse, lequel milieu liquide est à un pH acide. Optionnellement, le procédé selon l’invention comprend en outre une étape d’ajustement du pH de la biomasse brute, du lysat, du solubilisât et/ou du clarifiât au pH acide de l’étape de repos. Dans ce cas, le pH de la biomasse brute, du lysat, du solubilisât et/ou du clarifiât est ajusté à un pH inférieur à 7, notamment compris entre 1 et 6, encore préférentiellement compris entre 2 et 5, et toujours préférentiellement entre 3 et 4. Les réactifs pour ajuter le pH, i.e. acidifier ou basifier la biomasse brute, le lysat, le solubilisât et/ou le clarifiât peuvent être ajoutés sous une forme solide ou sous la forme d’une solution. Avantageusement, le pH de la biomasse brute, du lysat, du solubilisât et/ou du clarifiât est ajusté par l’ajout d’une solution acide ou basique, de préférence sous la forme d’une solution aqueuse. Des exemples de composés ajusteurs de pH sont donnés ci-dessus dans la description de l’étape c) : l’acide sulfurique, l’acide chlorhydrique, l’acide nitrique, l’acide phosphorique, l’acide acétique, l’hydroxyde de sodium, le carbonate de sodium ou le bicarbonate de sodium. Il est entendu que l’homme du métier saura déterminer si un composé, ou une solution, acide ou basique doit être ajouté à la biomasse brute, au lysat, au solubilisât et/ou au clarifiât afin d’ajuster le pH à la valeur désirée. Lorsqu’elle est présente cette étape d’ajustement du pH s’effectue en amont de l’étape de repos, sur la biomasse brute avant l’obtention du lysat, sur le lysat avant l’obtention du solubilisât ou du clarifiât, sur le solubilisât avant l’obtention du clarifiât et/ou sur le clarifiât. Autrement dit, l’étape d’ajustement de pH se fait sur le milieu comprenant le glycogène sur lequel sera mise en œuvre l’étape de repos. Avantageusement, lorsqu’elle est présente cette étape d’ajustement du pH s’effectue sur le lysat préalablement à l’étape de repos et préalablement aux étapes c) et d) de dilution et séparation. L’étape d’ajustement du pH peut sinon être concomitante à l’étape c) de dilution lorsqu’elle est présente. En particulier, si cette étape c) est présente, l’étape d’ajustement du pH peut s’effectuer sur le lysat concomitamment à cette étape c) de dilution et préalablement à l’étape de repos. Dans ce cas, après dilution du lysat, le solubilisât obtenu présente un pH inférieur à 7, notamment compris entre 1 et 6, préférentiellement compris entre 2 et 5, encore préférentiellement compris entre 3 et 4. L’étape de repos peut durer jusqu’à une semaine ou 7 jours. Préférentiellement, l’étape de repos dure entre 2 heures et une semaine encore préférentiellement, de 2 heures à 48 heures, encore préférentiellement de 8 à 36 heures et toujours préférentiellement de 10 à 24 heures. Selon le mode de réalisation, la phase de repos a une durée de plusieurs heures à plusieurs jours, notamment d’environ 3 heures, 6 heures, 8 heures, 10 heures, 12 heures, 24 heures, 36 heures, entre 48 et 72 heures, entre 2 et 7 jours, entre 3 et 7 jours, 4 jours, 5 jours ou encore 6 jours. Préférentiellement, la température de la biomasse brute et/ou du lysat et/ou du solubilisât, et/ou du clarifiât pendant cette phase de repos est maintenue à une température inférieure ou égale à 70°C en particulier comprise entre 4 et 50°C, préférentiellement entre 10 et 40°C, encore préférentiellement entre 15 et 30°C. Avantageusement, la température de la biomasse brute et/ou du lysat et/ou du solubilisât, et/ou du clarifiât pendant cette phase de repos est maintenue à une température constante, en particulier à une température inférieure ou égale à 70°C en particulier comprise entre 4 et 50°C, préférentiellement entre 10 et 40°C, encore préférentiellement entre 15 et 30°C. A noter que pour l’étape de repos, plus l’on se rapproche du couple température et pH optimum, plus le temps nécessaire pour la dégradation du glycogène sera courte, à titre d’exemple, pour une étape de repos à un pH compris entre 3 et 4 et une température entre 15 et 30°C, la durée devra être comprise entre 2 et 10h alors que pour une étape de repos à un pH d’environ 6 et une température d’environ 10°C, la durée devra être comprise entre 6 et 7 jours. Ajout optionnel d’enzymes exogènes Le procédé peut aussi comprendre une étape d’ajout d’enzymes exogènes en complément de l’étape de repos. Cet ajout d’enzymes exogènes permet, en tant que besoin, de compléter la dégradation du glycogène, notamment si le niveau de dégradation recherché n’est pas atteint. Il reste entendu que ce « complément » signifie que l’essentiel de la dégradation du glycogène est le résultat de la mise en œuvre du procédé selon indépendamment de cet éventuel ajout. On entend par « enzymes » des protéines permettant l’activation ou l’accélération de réactions chimiques ou biologiques. Dans le cadre de la présente des demande le terme « enzymes exogènes » fait référence à des enzymes qui ne sont pas produites naturellement par les cellules ou microorganismes de la biomasse d’algues rouges unicellulaires (ARU) traitée. En particulier, lesdites enzymes exogènes sont sélectionnées notamment parmi les enzymes extraites d’ Aspergillus , Bacillus ou encore Trichoderma . Les enzymes exogènes selon l’invention ont une activité de dégradation du glycogène. Ces enzymes sont bien connues de l’homme du métier et sont notamment choisies parmi les enzymes ayant une activité glucuronidase α1-4, les enzymes ayant une activité glucosidase α1-4, les enzymes ayant une activité glucosidase α1-6, les enzymes ayant une activité amylase ou un mélange de celles-ci. Il a été constaté que ces enzymes diminuent la taille des chaines glucosidiques qui peuvent alors être éliminées ultérieurement. Parmi les enzymes ayant une activité glucuronidase α1-4 et/ou glucosidase α1-4, on citera les pectinases connues pour dégrader la pectine, et en particulier les pectinases extraites de champignons filamenteux comme Aspergillus , et plus particulièrement les pectinases extraites d’ Aspergillus aculeatus , comme les enzymes commercialisées sous la dénomination Pectinex® par la société Novozymes. Des exemples d’enzymes ayant une activité glucosidase α1-6 sont les pullulanases connues pour hydrolyser les liaisons glucosidiques α1-6 de la pullulane, notamment connues aussi pour supprimer les ramifications de l’amidon. Il s’agit généralement d’enzymes extraites de bactéries, notamment des genres Bacillus. Les brevets US 6,074,854 et US 5,817,498 ainsi que la demande WO2009/075682 décrivent de telles pullulanases extraites de Bacillus deramificans ou de Bacillus acidopullulyticus. On connait aussi des pullulanases disponibles dans le commerce, notamment sous les dénominations Promozyme D2 et Novozym 26062 de chez Novozymes, ou Optimax L1000 de chez DuPont-Genencor. Parmi les enzymes ayant une activité amylase connues pour dégrader l’amidon, de nombreuses sont connues de l’état de la technique et sont décrites dans la littérature et notamment des demandes de brevet comme WO 2019/036721. On connaît des amylases disponibles dans le commerce, notamment sous les dénominations « Amylase AG XXL » (de Novozymes) ou « Panzym® AG XXL » (d’Eaton). Les enzymes peuvent être utilisées sous leur forme pure ou enrichie, et éventuellement en tant que mélange avec un ou plusieurs excipients. Les enzymes employées dans le procédé de l’invention sont sous la forme de poudre ou de solution. Dans ce dernier cas, les enzymes sont préférentiellement en solution dans l’eau. Les conditions préférées de mise en œuvre des enzymes exogènes sont un pH inférieur à 7 et une température de réaction inférieure à 60 °C, de préférence inférieure à 50 °C, et même inférieure à 30 °C. En particulier, la température de la solution à laquelle les enzymes exogènes sont ajoutées et à laquelle la réaction enzymatique se produit est comprise entre 4 et 60 °C, préférentiellement entre 20 et 42°C et le pH de la solution est inférieur ou égal à 5, de préférence d’environ 4,5. Les enzymes exogènes sont ajoutées après l’étape b) de lyse cellulaire, et l’homme du métier saura déterminer les conditions dans lesquelles d’éventuelles enzymes exogènes doivent être ajoutées après l’étape b) de lyse cellulaire ainsi que les conditions réactionnelles appropriées pour leur activité de dégradation du glycogène. Les enzymes exogènes peuvent être ajoutées dans le milieu soit sous forme libre soit immobilisées sur un support. Les enzymes exogènes peuvent être ajoutées au lysat et la réaction enzymatique par les enzymes exogènes se tient sur le lysat et l’étape de repos se tient quant à elle préalablement sur la biomasse brute et/ou préalablement sur le lysat et/ou postérieurement sur le solubilisât et/ou postérieurement sur le clarifiât. Selon un mode de réalisation préférentiel, les enzymes exogènes sont ajoutées après l’étape de repos. Dans ce cas : lorsque l’étape de repos est mise en œuvre sur la biomasse brute, on peut ajouter des enzymes exogènes dans le lysat et/ou dans le solubilisât et/ou dans le clarifiât pour compléter la dégradation du glycogène résultant du repos de la biomasse brute ; lorsque l’étape de repos est mise en œuvre sur le lysat, on peut ajouter des enzymes exogènes dans le lysat après l’étape de repos, ou dans le solubilisât et/ou dans le clarifiât pour compléter la dégradation du glycogène résultant du repos du lysat ; lorsque l’étape de de repos est mise en œuvre sur le solubilisât, on peut ajouter des enzymes exogènes dans le solubilisât après l’étape de repos et/ou dans le clarifiât, pour compléter la dégradation du glycogène résultant du repos du solubilisât ; lorsque l’étape de repos est mise en œuvre sur le clarifiât, on peut ajouter des enzymes exogènes dans le clarifiât après l’étape de repos pour compléter la dégradation du glycogène résultant du repos du clarifiât. Selon un mode de réalisation préférentiel, l’étape de repos est mise en œuvre sur le lysat et de préférence, l’ajout éventuel d’enzymes exogènes se fait sur le clarifiât ou le solubilisât. Cette combinaison de repos et d’ajout d’enzymes exogènes permet de diminuer les quantités d’enzymes exogènes employées par rapport aux méthodes de l’art antérieur. Les enzymes exogènes sont ainsi ajoutées dans une teneur inférieure à 0,01% en poids par rapport au poids total de la biomasse brute ou du lysat ou du solubilisât ou du clarifiât à traiter, pour une enzyme avec une activité enzymatique équivalente à celle de l’enzyme Pectinex Ultra SP-L d’activité déclarée par le fabricant de 3300 PGNU/g. Selon un mode de réalisation, la teneur en enzymes exogènes ajoutée est inférieure ou égale à 0,005%, en poids, préférentiellement inférieure ou égale à 0,0025%, plus préférentiellement inférieure ou égale à 0,0001% en poids. A noter que, au besoin, la concentration en enzyme exogène est ajustée en fonction de l’activité de l’enzyme exogène sélectionnée pour avoir une activité dans le milieu de réaction équivalente à celle d’une concentration selon l’invention de Pectinex Ultra SP-L à 3300 PGNU/g. L’homme du métier saura aussi adapter les quantités d’enzymes à ajouter au cours du procédé afin d’augmenter la dégradation du glycogène présent dans le lysat, solubilisât et/ou clarifiât. Préférentiellement, l’étape de dégradation du glycogène avec ou sans ajout d’enzymes exogènes est considérée comme suffisante lorsque au moins 50% de la teneur initiale en glycogène dans la biomasse brute a été dégradée, encore préférentiellement de 50% à 80% de la teneur initiale. e) Concentration Le procédé selon l’invention, peut comprendre en outre une étape e) de concentration du clarifiât selon des méthodes usuelles d’élimination de l’eau pour obtenir un extrait aqueux concentré. Les méthodes usuelles d’élimination de l’eau sont connues de l’homme du métier et incluent notamment la filtration ainsi que l’évaporation à pression atmosphérique ou sous vide comme l’atomisation, le séchage par infrarouge, le séchage par fenêtre de réfraction, la lyophilisation. Préférentiellement, l’étape e) du procédé selon l’invention permet la concentration des molécules d’intérêts tout en préservant les constituants essentiels du clarifiât. Selon le mode de concentration choisi, l’étape e) de concentration permet d’éliminer tout ou partie des impuretés comme les résidus solides, le glycogène résiduel, les oligomères et sucres résultant de la dégradation du glycogène, présentes dans le clarifiât, en particulier la concentration par filtration. Encore préférentiellement, le procédé de traitement de biomasse selon l’invention comprend une étape e) de concentration du clarifiât par filtration, en particulier par filtration tangentielle comme l’ultrafiltration. Préférentiellement, le procédé de traitement de biomasse selon l’invention comprend une étape e) de concentration pendant laquelle le clarifiât est concentré entre 2 et 1000 fois, encore préférentiellement entre 20 et 60 fois. Préférentiellement, l’étape e) de concentration est mise à un pH inférieur à 7, préférentiellement compris entre 1 et 6, encore préférentiellement compris entre 2 et 5 toujours encore préférentiellement entre 3 et 4. Outre le complément de dégradation par ajout d’enzyme et/ou la concentration du clarifiât, le procédé selon l’invention peut comprendre des étapes supplémentaires de purification du clarifiât et/ou de l’extrait aqueux concentré, notamment pour purifier les protéines en solution. Extrait aqueux L’extrait aqueux selon l’invention comprend différentes matières organiques selon le procédé de traitement appliqué, dont des protéines hydrosolubles parmi lesquelles se trouvent les phycocyanines, des sucres parmi lesquels se trouvent des sous-produits de dégradation du glycogène (oligomères de glucose) et éventuellement du glycogène résiduel non digéré et des insolubles. Lorsqu’elles sont présentes, les phycocyanines peuvent comprendre des phycocyanines résistantes aux pH acides. Par phycocyanines résistantes aux pH acides, on entend des phycocyanines stables aux pH acides, i.e. qui ne précipitent pas et qui ne perdent pas leur coloration à pH acide. La résistance ou stabilité aux pH acides peut être mesurée comme une perte de coloration inférieure à 10%, après un minimum de 10 minutes d’exposition à un pH acide, i.e. un pH inférieur à 7, en particulier un pH compris entre 2 et 5. La stabilité aux pH acides peut aussi être mesurée par d’autres méthodes tel que le suivi de la structure de la protéine. La présence des phycocyanines résistantes aux pH acides vient de la mise en œuvre des étapes d) et le cas échéant e) à un pH inférieur à 7, conformément au procédé d’extraction décrit dans WO2018/178334, préférentiellement à un pH compris entre 1 et 6, encore préférentiellement entre 2 et 5 et encore plus préférentiellement entre 3 et 4. Selon un mode préféré, l’extrait aqueux comprend des phycocyanines résistantes à un pH acide. Un extrait aqueux concentré est obtenu par le procédé selon l’invention comprenant une étape e) de concentration du clarifiât telle que décrite ci-dessus. A l’inverse, un extrait aqueux non concentré est obtenu par le procédé selon l’invention ne comprenant pas une étape e) de concentration du clarifiât telle que décrite ci-dessus. Préférentiellement, l’extrait aqueux selon l’invention, concentré ou non concentré, ne comprend pas d’enzymes exogènes ou comprend une concentration en enzymes exogènes indétectable par des méthodes de dosage usuelles notamment après précipitation des protéines avec de l’acétonitrile, digestion à la trypsine puis analyse par spectrométrie de masse (LC-MS-MS). En particulier, préférentiellement, l’extrait aqueux selon l’invention, concentré ou non concentré, ne comprend pas d’enzymes exogènes choisies parmi les pectinases, les amylases et les pullulanases ou en comprend une concentration indétectable par des méthodes de dosage usuelles notamment par spectrométrie de masse. Si besoin, l’extrait aqueux est préparé de façon à éliminer toutes impuretés qui le rendraient impropre à une consommation, en particulier une consommation humaine. L’extrait aqueux selon l’invention peut également être formulé par des moyens connus de l’homme du métier pour éviter la dégradation de ses constituants lors de son stockage ou son utilisation ultérieure. Enfin, l’extrait aqueux selon l’invention, éventuellement formulé, peut être conditionné pour sa conservation et son usage, soit dans des containers de grand volume, soit dans des récipients plus petits, par exemple avec des volumes correspondant à un usage unique, dit unidose, pour une consommation humaine. Dans ce cas, le contenant peut être rigide, comme une ampoule de verre, ou souple, comme une gélule propre à la consommation. Les teneurs en sucres, en particulier glucose, mannose et galactose (respectivement dits « glucose hydrolysé », « galactose hydrolysé » et « mannose hydrolysé ») d’un extrait aqueux selon l’invention sont mesurées, après hydrolyse acide de l’échantillon, par chromatographie liquide à haute performance via une colonne Hi-Plex H+ type « ion exclusion / ligand exchange column » et une détection par réfractométrie (ci-après « dosage des sucres hydrolysés par HPLC-RID »). Pour cela, 1,5 mL du surnageant d’un échantillon homogénéisé au vortex sont hydrolysés avec 1,5mL d’acide sulfurique 2N, à 110°C pendant 2 heures. L’échantillon est ensuite filtré (0.22 µm) et analysé. A noter que la teneur en glucose ainsi mesurée comprend à la fois le glucose du glycogène résiduel non digéré et le glucose libre présents dans l’extrait. Selon l’invention, la teneur en glucose libre est déterminée par analyse biochimique, notamment à l’aide d’un analyseur biochimique YSI® en suivant les préconisations du fabricant. Ainsi, pour estimer la teneur en glycogène résiduel non digéré dans un extrait aqueux, il suffit de soustraire la teneur en glucose libre à la teneur en glucose hydrolysée. Selon l’invention, la teneur en protéines d’un extrait aqueux est déterminée par la méthode DUMAS. L’échantillon est soumis à une combustion à haute température dans un flux d’oxygène pur, les oxydes d’azote produits sont réduits par le cuivre. Après séparation des sous-produits de la réaction, l’azote est dosé avec un détecteur à conductivité thermique, le résultat est exprimé en quantité N (%). Ce pourcentage d’azote est ensuite ramené à une quantité de protéines en appliquant la formule : N*6,25 (%) (ISO/TS 16634-2 :2009). Enfin, pour déterminer la teneur en C-phycocyanine d’un échantillon selon l’invention, 500µl d’échantillon sont mélangés avec un tampon Tris-Cl 100 mM pH 7,5 (1,5 ml) et les absorbances à 652 et 620 nm mesurées via un spectrophotomètre Metler Toledo. La concentration C-phycocyanine est alors calculée en appliquant la formule suivante : [Phycocyanine] en mg/ml = (0,162 x A620 nm – 0,098 x A652 nm) x dilution Selon un mode de réalisation, l’extrait aqueux non concentré obtenu selon l’invention a un rapport glycogène résiduel non digéré estimé (g/L) / C-phycocyanine (g/L) inférieur à 6, avantageusement inférieur à 4, de préférence inférieur à 3, plus préférentiellement inférieur à 2,5, ou encore plus préférentiellement inférieur à 1. L’extrait aqueux non concentré selon l’invention présente une concentration en sucre totaux mesurée par dosage des sucres hydrolysés par HPLC-RID inférieure ou égale à 40 g/L, notamment comprise entre 0,1et 40 g/L, préférentiellement comprise entre 1 et 20 g/L, plus préférentiellement comprise entre 3 et 11 g/L, et/ou une concentration en glucose hydrolysé inférieure ou égale à 20 g/L, préférentiellement comprise entre 0,1 et 20 g/L, préférentiellement comprise entre 1 et 10 g/L, encore préférentiellement comprise entre 2 et 5 g/L, et/ou une concentration en galactose hydrolysé inférieure ou égale à 10 g/L, notamment comprise entre 0,01 et 10 g/L, préférentiellement comprise entre 0,1 et 5 g/L, plus préférentiellement comprise entre 0,5 et 3 g/L, et/ou une concentration en mannose hydrolysé inférieure ou égale à 10 g/L, notamment comprise entre 0,01 et 10 g/L, préférentiellement comprise entre 0,1 et 5 g/L, plus préférentiellement comprise entre 0,5 et 3 g/L, et/ou une concentration en glucose libre inférieure ou égale à 10 g/L notamment comprise entre 0,01 et 10 g/L, préférentiellement comprise entre 0,1 et 5 g/L, encore préférentiellement comprise entre 0,2 et 2 g/L. Les teneurs en C-phycocyanine de l’extrait aqueux non concentré vont avantageusement de 0,1 à 12 g/L, préférentiellement 0,5 à 8 g/L, plus préférentiellement 1 à 7 g/L. De préférence, l’extrait aqueux non concentré présente un rapport C-phycocyanines (g/L) /sucres totaux mesurés par dosage des sucres hydrolysés par HPLC-RID (g/L) d’au moins 0,001, préférentiellement de 0,005 à 120, plus préférentiellement 0,05 à 12, encore plus préférentiellement 0,1 à 3. Selon un autre mode préféré de réalisation de l’invention, l’extrait aqueux non concentré comprend de la C-phycocyanine et des sucres totaux dans un rapport C-phycocyanine (g/L) / sucres totaux mesurés par dosage des sucres hydrolysés par HPLC-RID (g/L) de 0,005 à 120, en particulier de 0,05 à 12, plus préférentiellement de 0,1 à 3. Dans un mode de réalisation particulier où l’extrait aqueux concentré a une grande concentration en C-phycocyanine, le rapport C- phycocyanine (g/L) / sucres totaux (g/L) est d’au moins 90, et peut dépasser 120. De préférence, l’extrait aqueux non concentré présente un rapport C-phycocyanines (g/L) / mannose hydrolysé (g/L) d’au moins 0,01, préférentiellement de 0,01 à 1200, plus préférentiellement 0,1 à 80, encore plus préférentiellement 0,1 à 12. De préférence, l’extrait aqueux non concentré présente un rapport C-phycocyanines (g/L) /galactose hydrolysé (g/L) d’au moins 0,01, préférentiellement de 0,01 à 1200, plus préférentiellement 0,1 à 80, encore plus préférentiellement 0,1 à 12. Le rapport C-phycocyanine (g/L) / glucose hydrolysé (g/L) de l’extrait aqueux non concentré est préférentiellement inférieur à 120 et préférentiellement va de 0,005 à 120. Préférentiellement, ce ratio est compris entre 0,05 et 12, plus préférentiellement 0,1 et 10. Préférentiellement, l’extrait aqueux concentré selon l’invention présente une teneur en matière sèche de 2 à 1000 fois plus élevée que celle du clarifiât, ou extrait aqueux non concentré, dont il est issu, encore préférentiellement de 20 à 60 fois plus élevée. Les teneurs en C-phycocyanine de l’extrait aqueux concentré vont avantageusement de 7 à 120 g/L, préférentiellement 20 à 100 g/L, plus préférentiellement 40 à 80 g/L. L’extrait aqueux concentré selon l’invention présente une concentration en sucre totaux mesurée par dosage des sucres hydrolysés par HPLC-RID inférieure ou égale à 50 g/L, notamment comprise entre 1 et 50 g/L, préférentiellement comprise entre 5 et 40 g/L, plus préférentiellement comprise entre 10 et 30 g/L, et/ou une concentration en glucose hydrolysé inférieure ou égale à 20 g/L, préférentiellement comprise entre 0,1 et 20 g/L, préférentiellement comprise entre 1 et 10 g/L, encore préférentiellement comprise entre 2 et 5 g/L, et/ou une concentration en galactose hydrolysé inférieure ou égale à 15 g/L, notamment comprise entre 0,5 et 15 g/L, préférentiellement comprise entre 1 et 13 g/L, plus préférentiellement comprise entre 3 et 8 g/L, et/ou une concentration en mannose hydrolysé inférieure ou égale à 15 g/L, notamment comprise entre 0,5 et 15 g/L, préférentiellement comprise entre 1 et 13 g/L, plus préférentiellement comprise entre 3 et 8 g/L, et/ou une concentration en glucose libre inférieure ou égale à 15 g/L notamment comprise entre 0,01 et 15 g/L, préférentiellement comprise entre 0,5 et 8 g/L, encore préférentiellement comprise entre 1 et 4 g/L. Le ratio en poids C-phycocyanine (g/L) / glucose hydrolysé (g/L) de l’extrait aqueux concentré va de 2 à 80. Préférentiellement, ce ratio est compris entre 10 et 70, plus préférentiellement 15 et 60. De préférence, l’extrait aqueux concentré présente un rapport C-phycocyanine (g/L) / mannose hydrolysé (g/L) d’au moins 0,01, préférentiellement de 0,01 à 1200, plus préférentiellement 0,1 à 80, encore plus préférentiellement 0,3 à 12. De préférence, l’extrait aqueux concentré présente un rapport C-phycocyanine (g/L) /galactose hydrolysé (g/L) d’au moins 0,01, préférentiellement de 0,01 à 1200, plus préférentiellement 0,1 à 80, encore plus préférentiellement 0,3 à 12. De préférence, l’extrait aqueux concentré présente un rapport protéines (%) / glycogène résiduel non digéré estimé (g/L) de 0,2 à 6,0, plus préférentiellement 0,5 à 5,0, encore plus préférentiellement 1,0 à 4,5. De préférence, l’extrait aqueux concentré présente une teneur estimée en glycogène résiduel non digéré (teneur en glucose hydrolysé (g/L) – teneur en glucose libre (g/L)) de 0,1 à 10 g/L, plus préférentiellement de 0,2 à 7 g/L, encore plus préférentiellement 0,3 à 5 g/L. De préférence, l’extrait aqueux concentré présente un rapport protéines (%) /sucres totaux mesurés par dosage des sucres hydrolysés par HPLC-RID (g/L) inférieur à 1%, préférentiellement compris entre 1 et 0,01%, plus préférentiellement entre 0,8 et 0,05%, encore plus préférentiellement entre 0,6 et 0,1%. La présente invention concerne enfin un procédé de préparation d’un extrait aqueux concentré d’une biomasse d’ARU du genre Galdieria, ledit procédé comprenant un procédé de traitement avec une étape de dégradation du glycogène, et une étape de concentration comme défini précédemment. Utilisation L’invention concerne également l’utilisation de tout ou partie d’un extrait aqueux obtenu à partir d’un procédé selon l’invention en tant que produit pour la préparation de compositions pharmaceutiques ou alimentaires, y compris des aliments ou des compositions pharmaceutiques, nutraceutiques, alimentaires, cosmétiques ou industrielles. Il s’agit notamment de l’utilisation d’un extrait aqueux obtenu selon un procédé de l’invention comprenant des phycocyanines pour la préparation de compositions pharmaceutiques ou alimentaires. Selon un mode de réalisation, une composition selon l’invention comprend tout ou partie d’un extrait aqueux obtenu avec le procédé selon l’invention et un ou plusieurs excipients. Selon un mode de réalisation préféré, la composition selon l’invention est une composition acide dont le pH est inférieur ou égal à 6, préférentiellement inférieur ou égal à 5, voire inférieur ou égal à 4 et en particulier compris entre 2 et 4. Selon l’invention, on entend par composition acide toute composition comprenant tout ou partie d’un extrait aqueux obtenu avec un procédé selon l’invention ainsi qu’un acide minéral ou organique. Des acides minéraux ou organiques susceptibles d’être employés dans les compositions selon l’invention sont connus de l’homme du métier. Parmi les acides minéraux, on citera en particulier les acides carboniques, phosphorique, chlorhydrique, sulfurique, perchlorique, sulfonique et nitrique. Parmi les acides organiques, on citera en particulier les acides citrique, lactique, malique, tartrique et succinique. Les compositions acides selon l’invention peuvent en outre comprendre un véhicule pouvant comprendre des constituants structurels associés à des composés actifs identifiés au regard de leurs apports nutritifs ou encore pour leurs propriétés bénéfiques à la santé de l’homme ou de l’animal. Concernant les compositions autres que les compositions alimentaires, elles peuvent être pharmaceutiques, vétérinaires ou cosmétiques et comprendre en outre un ou plusieurs additifs et/ou actifs connus et utilisés dans ce type d’indication. Les compositions selon l’invention peuvent se présenter sous toute forme usuelle connues de l’homme du métier. On citera notamment les formes solides, liquides, fluides, pâteuses ou visqueuses et plus particulièrement les crèmes, les gels, les mousses, les pâtes. Les compositions selon l’invention peuvent aussi se présenter sous la forme d’aliments secs à cuire, de poudres à diluer, des compositions gélatineuses pour les compositions alimentaires. Dans ces compositions solides, tout ou partie de l’extrait obtenu selon l’invention est préférentiellement ajouté sous la forme de poudre. Les compositions liquides sont avantageusement des compositions aqueuses dans lesquelles tout ou partie de l’extrait obtenu selon l’invention est dissout. Selon un mode particulier de réalisation de l’invention, la composition liquide peut être une composition alimentaire et plus spécifiquement une boisson acide, gazeuse ou non. On citera en particulier les sodas, les jus, les boissons pour sportifs, boissons d’effort, boissons de récupération, etc. Les compositions de ces boissons sont bien connues de l’homme du métier et peuvent comprendre, notamment, des sucres, des sels minéraux, des additifs alimentaires ou du gaz dissout. Une boisson acide selon l’invention peut être une boisson acide de l’art antérieur dans laquelle le colorant habituellement employé a été remplacé en totalité ou en partie par un extrait aqueux comprenant des phycocyanines résistantes à pH acide selon l’invention. La teneur en phycocyanines dans les compositions selon l’invention sera conforme aux concentrations usuellement appliquées dans le domaine d’application visé. Finalement, selon un deuxième aspect, l’invention concerne un procédé de traitement d’une biomasse d’algues rouges unicellulaires (ARU) du genre Galdieria dans lequel la dégradation du glycogène est réalisée sur le lysat obtenu à l’étape b) avec une concentration en enzymes exogènes préférentiellement inférieure ou égale à 0,0001% en poids par rapport au poids total du lysat pour une enzyme avec une activité enzymatique équivalente à celle de l’enzyme Pectinex Ultra SP-L d’activité déclarée par le fabricant de 3300 PGNU/g. La dégradation du glycogène y est réalisée au moyen d’une étape de repos telle que décrite au premier aspect de la présente invention ou selon une méthode connue de l’homme du métier telle que l’utilisation d’enzymes exogènes conformément à WO2020/144330. Les conditions de mise en œuvre des étapes a), b), c), d) et e) sont identiques à celles décrites pour le premier aspect de l’invention, de même que les enzymes et leurs usages, la composition de l’extrait aqueux obtenu et son usage. L’homme du métier saura déterminer les quantités d’enzymes, de 0 à 0,0001% en poids par rapport au poids total du lysat, appropriées pour mener à bien la dégradation du glycogène. De préférence, la dégradation du glycogène est mise en œuvre sur le lysat dans des conditions opératoires (pH, température et temps) correspondant aux conditions de mise en œuvre de l’étape de repos sur le lysat décrites plus haut pour le premier aspect de l’invention. EXEMPLES Exemple 1 : Étude de la dégradation du glycogène avec et sans ajout d’enzymes exogènes à différents pH La quantité de glucose libérée dans le temps dans des lysats de biomasse de Galdieria sulphuraria à pH 3.75 sans ajout d’enzyme, à pH 6 sans ajout d’enzyme et à pH 6 avec ajout d’enzyme (1%, « Amylase AG XXL » de Novozymes), à 37 °C a été mesurée en fonction du temps (YSI® 2950). Cette cinétique est présentée en . L’acidification du lysat est réalisée par l’ajout d’une quantité suffisante d’acide citrique, pour passer d’un pH 6 à 3.75. Les résultats montrent qu’à pH acide, 3.75, une quantité de glucose plus importante qu’à pH 6 est libérée. Après 24 heures d’incubation à pH 3.75 sans ajout d’enzyme, le glucose libéré dans l’échantillon atteint même un niveau identique que dans l’échantillon dans lequel une enzyme exogène a été ajoutée. Il est à noter que la libération de glucose se fait également à pH 6 en l’absence d’ajout d’enzyme exogène ; la cinétique est seulement plus lente (pente plus faible). Exemple 2 : Étude de la dégradation du glycogène sans ajout d’enzymes exogènes à différents pH La quantité de glucose libérée dans le temps dans des lysats de biomasse de Galdieria sulphuraria (20% de matière sèche (MS) par rapport au volume total) à des pH compris entre 3 et 7 sans ajout d’enzyme et à température ambiante (20°C) a été mesurée au cours du temps (YSI® 2950). Cette cinétique est présentée en . L’acidification et la basification du lysat sont réalisées respectivement par l’ajout d’une quantité suffisante d’acide citrique ou de soude. Les résultats montrent que dans un temps donné, plus le pH augmente, moins le glycogène est dégradé. La réalisation de digestion du glycogène sans ajout d’enzyme exogène sur du lysat montre une activité principalement dans les conditions les plus acides. Il est observé ici que cette activité est relativement importante à pH 3 et un peu moins à pH 4. L'activité pour les pH de 5 à 7 est identique et relativement très lente. Exemple 3 : Étude de la dégradation du glycogène à différentes températures avec et sans ajout d’enzymes exogènes La quantité de glucose libérée dans le temps dans des lysats de biomasse de Galdieria sulphuraria (20% de matière sèche (MS) par rapport au volume total) à pH 3.75 est étudiée pour différentes températures (4 °C, 20 °C et 37 °C) sans et avec une enzyme (1% « Amylase AG XXL » de Novozymes) à pH 3.75 et à une température de 37°C (YSI® 2950). Les résultats sont présentés en . Ils montrent une digestion du glycogène en glucose libre y compris en l’absence d’ajout d’enzyme. Notamment, après 24 heures à 37 °C, la quantité de glucose libéré est la même avec et sans ajout d’enzyme. Exemple 4 : Étude de la dégradation du glycogène à différentes températures sans ajout d’enzyme exogène La quantité de glucose libérée dans le temps dans des lysats de biomasse de Galdieria sulphuraria (20% de matière sèche (MS) par rapport au volume total) à pH 4 est étudiée pour différentes températures (4 °C, 15 °C, 20 °C, 30 °C, 40 °C et 50 °C) sans ajout d’enzyme (YSI® 2950). Les résultats sont présentés en . Ils montrent que dans un temps donné, plus la température augmente, plus une quantité importante de glycogène est digérée lors d’une étape de repos selon l’invention. Exemple 5 : Étude de la dégradation du glycogène à différents stade d’un procédé d’extraction La quantité de glucose libérée, à température ambiante (20°C), dans du lysat (20% de matière sèche (MS) par rapport au volume total) et du solubilisât de biomasse de Galdieria sulphuraria à (7,5 % de matière sèche par rapport au volume total) à pH 3.75 sans ajout d’enzyme exogène est étudiée (YSI® 2950). Dans ce contexte, la cinétique de libération de glucose à température ambiante (20°C), dans du lysat de biomasse de Galdieria sulphuraria à pH 3.75 avec ajout d’enzyme exogène (1% « Amylase AG XXL », Novozymes) est prise comme témoin. Ces cinétiques sont présentées en . D’après les résultats obtenus et par extrapolation, il est possible de conclure que, y compris sans ajout d’enzyme, dans le cas du lysat, après 24 heures, tout le glycogène digestible sera dégradé et libéré sous forme de glucose libre. En revanche, pour le solubilisât, la réaction semble plus lente et n’est toujours pas complète au bout de 24 heures. A noter que les échantillons étudiés présentent tous une bonne filtrabilité après digestion du glycogène qu’ils aient été préparés avec ou sans ajout d’une enzyme exogène. Exemple 6 : Caractérisation d’un extrait préparé selon l’invention Un lysat de biomasse de Galdieria sulphuraria (20% de matière sèche (MS) par rapport au volume total) est maintenu à pH acide de 3,7 pendant 12 heures, à 25 °C. Un extrait est préparé à partir de ce lysat. Pour cela, le lysat est lavé avec une quantité d’eau représentant au total moins de 4 fois le volume total de biomasse lysée. Ce volume d’eau est scindé en 3 fractions pour réaliser 3 lavages successifs de la biomasse lysée. Les eaux de lavage sont récupérées, conformément à l’enseignement de la demande de brevet WO2020/161280. Le produit obtenu est ensuite filtré sur une membrane fibre creuse ayant une porosité de 70kDa (extrait aqueux non concentré) avec une étape finale de diafiltration et le filtrat est récupéré, conformément à l’enseignement de la demande de brevet WO2020/144330 (extrait aqueux concentré). L’extrait aqueux concentré et l’extrait aqueux non concentré ainsi obtenus sont analysés pour connaitre la teneur en sucres totaux, mannose hydrolysé, galactose hydrolysé et glucose hydrolysé par HPLC-RID, la teneur en glucose libre à l’YSI® 2950, la teneur en phycocyanine ainsi que la teneur en protéines. Les résultats obtenus sont présentés dans le tableau 1 ci-dessous. Extrait aqueux non concentré Extrait aqueux concentré Glucose libre (g/L) ND 0,04 Glucose hydrolysé (g/L) 3,40 1,5 Galactose hydrolysé (g/L) 0,90 7,00 Mannose hydrolysé (g/L) 0,95 8,00 C-phycocyanine (g/L) 6,88 78,00 Ratio protéines (%) : glycogène résiduel non digéré estimé (g/L) ND 4,3 Ratio protéines (%) : sucres totaux (g/L) ND 0,4 . Procédé de traitement d’une biomasse d’algues rouges unicellulaires (ARU) du genre Galdieria, ledit procédé de traitement de biomasse d’ARU comprenant les étapes de : récolte de la biomasse par séparation du milieu de culture pour l’obtention d’une biomasse brute d’ARU, lyse cellulaire de la biomasse brute de l’étape (a) pour obtenir un lysat, optionnellement dilution du lysat de l’étape (b) pour obtenir un solubilisât, et séparation des insolubles en suspension dans le lysat de l’étape (b) ou le solubilisât de l’étape (c) pour obtenir un clarifiât, caractérisé en ce qu’il comprend une étape de dégradation du glycogène par maintien au repos (étape de repos) pendant au moins 2 heures de la biomasse brute et/ou du lysat et/ou du solubilisât, et/ou du clarifiât, durant laquelle le milieu liquide comprenant le glycogène est à pH acide. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que l’étape de repos dure entre 2 heures et une semaine. Procédé selon la revendication 1 ou 2, caractérisé en ce que l’étape de repos se fait à une température inférieure ou égale à 70 °C. Procédé selon l’une des revendications 1 à 3, caractérisé en ce que l’étape de repos est mise en œuvre sur le lysat et/ou le solubilisât le cas échéant et/ou le clarifiât, préférentiellement sur le lysat. Procédé selon la revendication 4, caractérisé en ce qu’il comprend, préalablement à l’étape de repos, une étape d’ajustement du pH de la biomasse brute, du lysat, du solubilisât et/ou le cas échéant du clarifiât à un pH inférieur à 7, en particulier entre 1 et 6, préférentiellement entre 2 et 5, plus préférentiellement entre 3 et 4. Procédé selon l’une des revendications 1 à 5, caractérisé en ce que le procédé comprend en outre une étape d’ajout d’enzymes exogènes capables de dégrader le glycogène, préférentiellement après l’étape de repos, plus préférentiellement dans le solubilisât ou le clarifiât. Procédé selon l’une des revendications 1 à 6, caractérisé en ce que le procédé comprend en outre une étape e) concentration du clarifiât pour obtenir un extrait aqueux concentré. Lysat, solubilisât ou clarifiât obtenu par le procédé selon l’une des revendications 1 à 7. Lysat, solubilisât ou clarifiât selon la revendication 8, caractérisé en ce qu’il comprend une teneur estimée en glycogène résiduel non digéré de 0,1 à 10 g/L, plus préférentiellement de 0,2 à 7 g/L, encore plus préférentiellement 0,3 à 5 g/L. Lysat, solubilisât ou clarifiât selon l’une des revendications 8 ou 9, caractérisé en ce qu’il comprend un rapport protéines (%) / glycogène résiduel non digéré estimé de 0,2 à 6,0, plus préférentiellement 0,5 à 5,0, encore plus préférentiellement 1,0 à 4,5. Lysat, solubilisât ou clarifiât selon l’une des revendications 8 à 10, caractérisé en ce qu’il comprend un rapport protéines (%) / sucres totaux mesurés par dosage des sucres hydrolysés par HPLC-RID (g/L) inférieur à 1%, préférentiellement compris entre 1 et 0,01%, plus préférentiellement entre 0,8 et 0,05%, encore plus préférentiellement entre 0,6 et 0,1%. Lysat, solubilisât ou clarifiât selon l’une des revendications 8 à 11, caractérisé en ce qu’il comprend une teneur en C-phycocyanine comprise entre 0,1 et 12 g/L. Composition nutraceutique, alimentaire ou cosmétique comprenant un lysat, solubilisât ou clarifiât selon l’une des revendications 8 à 12. Composition selon la revendication 13 caractérisée en ce qu’elle comprend un acide minéral ou organique. Un procédé de traitement d’une biomasse d’algues rouges unicellulaires (ARU) du genre Galdieria comprenant les étapes de : récolte de la biomasse par séparation du milieu de culture pour l’obtention d’une biomasse brute d’ARU, lyse cellulaire de la biomasse brute de l’étape (a) pour obtenir un lysat, optionnellement dilution du lysat de l’étape (b) pour obtenir un solubilisât, et séparation des insolubles en suspension dans le lysat de l’étape (b) ou le solubilisât de l’étape (c) pour obtenir un clarifiât, caractérisé en ce que la dégradation du glycogène s’effectue sur le lysat obtenu à l’étape b) avec préférentiellement une concentration en enzymes exogènes comprise entre 0 et 0,0001% en poids par rapport au poids total du lysat pour une enzyme avec une activité enzymatique de 3300 PGNU/g.