Brevet FR3151339A1 — publié le 20250124

L’invention concerne le domaine technique de la culture de microcompartiments cellulaires en trois dimensions. En particulier, l’invention a pour objet un procédé de préparation d’un microcompartiment cellulaire en trois dimensions comprenant la mise en œuvre d’une encapsulation d’au moins une cellule dans de l’hydrogel de façon à former une suspension comprenant des microcompartiments cellulaire dans une solution de trempage et d’au moins une étape appliquant une gravité d’au moins 10g sur au moins une cellule et/ou au moins un microcompartiment cellulaire. L’invention se rapporte également à un dispositif adapté pour la mise en œuvre d’au moins une partie dudit procédé. Optimisation de la culture cellulaire en trois dimensions L’invention concerne le domaine technique de la culture de microcompartiments cellulaires en trois dimensions et des dispositifs de filtration d’objets mésoscopiques en suspension. En particulier, l’invention a pour objet un procédé de préparation d’un microcompartiment cellulaire en trois dimensions ainsi qu’un dispositif adapté pour la mise en œuvre d’au moins une partie dudit procédé. Etat de l’art La culture cellulaire en trois dimensions (3D) est une technique de laboratoire qui offre de vastes perspectives d’application dans de multiples domaines. Elle propose une alternative précieuse aux méthodes de culture cellulaire conventionnelles en deux dimensions (2D), en permettant de cultiver des cellules dans un environnement plus proche de leur contexte physiologique naturel. Cette technologie a le potentiel de révolutionner divers domaines, de la recherche fondamentale à la pharmacologie, en passant par la thérapie cellulaire. Les méthodes traditionnelles de culture cellulaire en 2D ont longtemps été le pilier de la recherche biomédicale, mais elles présentent certaines limites importantes. Les cellules cultivées en 2D sont disposées sur des surfaces planes, ce qui ne reflète pas fidèlement l'environnement tridimensionnel complexe des tissus vivants. Cette divergence entre les cultures cellulaires en 2D et les conditions in vivo peut entraîner des résultats inadéquats ou inexacts, limitant ainsi la pertinence de son utilisation. La culture cellulaire en 3D vise à surmonter ces défis en permettant aux cellules de croître dans un environnement qui mime davantage la structure tridimensionnelle des tissus biologiques. Pour ce faire, plusieurs méthodes ont été développées, chacune présentant des avantages et des inconvénients en fonction de l’utilisation envisagées. Malgré l’existence d’une grande diversité de techniques, la culture cellulaire en 3D reste en constante évolution dans l’objectif de parvenir à standardiser les procédés et passer certaines limites techniques. A ce jour, un inconvénient majeur de la culture cellulaire en 3D réside dans le fait que, dans certains cas, la survie cellulaire peut être insuffisante et que le facteur d’amplification peut être considéré comme faible au vu du comportement des cellules in vivo . En d’autres termes, la mise en œuvre de procédés de cultures cellulaires en 3D peut présenter de nombreux défis liés à la viabilité cellulaire et à la production de quantité suffisante de cellules en fonction de l’utilisation envisagée. Ces inconvénients sont, en partie, étroitement lié au fait que, dans certains cas, les cellules ne sont pas correctement organisées au sein de la structure cellulaire en 3D. Lorsque les cellules ne sont pas suffisamment bien intégrées dans la structure tridimensionnelle, elles ont tendance à se retrouver isolées ou dispersées, ce qui peut entraîner une mortalité cellulaire accrue. Lorsque les cellules sont isolées au sein de la structure cellulaire en 3D, elles peuvent rencontrer plusieurs difficultés : *Un support structurel insuffisant : Les cellules isolées dispose d’une faible cohésion structurelle par rapport à celles qui sont correctement organisées en 3D. En conséquence, elles sont plus vulnérables aux forces mécaniques et aux contraintes du milieu de culture, ce qui peut entraîner une mortalité cellulaire accrue. *Des difficultés d'approvisionnement en nutriments et en oxygène : Les cellules isolées peuvent rencontrer des difficultés à accéder aux nutriments et à l'oxygène, car elles ne bénéficient pas de la même distribution que celles qui sont correctement organisées dans la structure 3D. Cette limitation peut compromettre leur survie et leur croissance. *Des interactions cellulaires limitées : Les cellules isolées sont moins susceptibles d'interagir de manière appropriée avec leurs cellules voisines, ce qui peut affecter négativement la signalisation cellulaire, la communication intercellulaire et la régulation des processus cellulaires essentiels. *Une amplification limitée : La dispersion des cellules dans la culture 3D peut rendre difficile leur multiplication et leur amplification, car elles sont moins enclines à former des colonies, cystes ou des agrégats prolifératifs. Par conséquent, le défaut d'organisation structurelle adéquate des cellules dans les cultures 3D peut conduire à une plus grande mortalité cellulaire et à des limitations quant à la production de cellules. Ainsi, il apparait crucial de développer des méthodes permettant de favoriser l’organisation des cellules en amas ou agrégats, minimisant ainsi les inconvénients précités, tel qu’une viabilité et une amplification cellulaire insuffisantes. Il existe donc un besoin pour un nouveau procédé de préparation de microcompartiment cellulaires en trois dimensions permettant de favoriser l’apparition d’amas ou d’agrégats cellulaires tout en améliorant la survie et l’amplification cellulaire. De surcroit, il existe également un besoin pour un dispositif de filtration d’objets mesocopiques en suspension utilisable notamment dans la mise en œuvre d’un tel procédé de préparation de microcompartiment cellulaires en trois dimensions. Les objets cellulaires mesoscopiques en suspension, ci-après nommés OCMS, comprennent un ensemble d’objets dont la dimension varie entre 5µm et 5mm, qui sont en suspension et qui comprennent au moins une cellule eucaryote, encapsulée ou non. Par exemple, les OCSM comprennent des cellules humaines en suspension, des microtissus, des sphéroïdes, agrégats cellulaires, « embryoid bodies », encapsulés ou non. Dans le domaine de la présente invention, il est connu des modules de filtration d’OCMS comprenant un corps comportant une membrane filtrante destinée à retenir les OCMS mais par exemple apte à laisser passer la solution dans laquelle les OCMS baignent. Plusieurs techniques de filtrations existent, en particulier la filtration frontale, où les OCMS sont injectés de manière normale au plan de la membrane filtrante. Cette technique peut provoquer l’accumulation et la compaction des OCMS sur la membrane qui peut empêcher la bonne filtration des OCMS, les endommager et boucher le filtre. Une autre technique de filtration est la filtration tangentielle, où les OCMS en solution sont injectés à travers un tube poreux à la solution mais pas aux OCMS, dans lequel la solution est soutirée à travers la paroi du tube, tandis que les OCMS traversent le tube. Cette technique de filtration tangentielle permet de minimiser le risque d’accumulation et de compaction. L’inconvénient de cette technique est qu’elle repose sur des filtres complexes à fabriquer et qu’elle ne permette que difficilement un rinçage complet des OCMS. En effet, il reste toujours une proportion résiduelle de solution de trempage après rinçage due au fait que les OCMS ne sont pas confinés dans un compartiment et il faut de multiples étapes de rinçage pour atteindre la concentration en solution de rinçage souhaitée. Un autre objectif de l’invention est de pallier ces inconvénients. Pour répondre à ce besoin, les inventeurs ont mis au point un procédé de préparation d’un microcompartiment cellulaire particulier qui permet d’optimiser la culture cellulaire en trois dimensions. Ainsi, l’invention a pour objet un nouveau procédé de préparation d’un microcompartiment cellulaire en trois dimensions comprenant la mise en œuvre des étapes suivantes : - une étape d’encapsulation d’au moins une cellule dans de l’hydrogel, de façon à former au moins un microcompartiment cellulaire, - une étape de mise en suspension dudit microcompartiment cellulaire dans une solution, préférentiellement une solution de trempage; et - au moins une étape appliquant une accélération centrifuge d’au moins 10 g sur au moins une cellule et/ou au moins un microcompartiment cellulaire. L’étape d’encapsulation d’au moins une cellule dans de l’hydrogel peut être réalisée simultanément à la mise en suspension du ou des microcompartiments cellulaires dans la solution. Avantageusement, le procédé selon l’invention utilise avantageusement l’application de la gravité, notamment via l’effet centrifuge, pour optimiser les conditions de culture des cellules dans un système de culture en 3D. Préférentiellement, le procédé selon l’invention comprend une étape appliquant une accélération centrifuge comprise entre 10 et 3000 g. L’application d’au moins une étape appliquant une accélération centrifuge d’au moins 10g sur au moins une cellule et/ou au moins un microcompartiment est particulièrement avantageux, et ce, à tout moment du procédé de préparation d’un microcompartiment cellulaire en trois dimensions. Selon un objet préféré, l’invention concerne un procédé de préparation d’un microcompartiment cellulaire en trois dimensions comprenant la mise en œuvre des étapes suivantes : a) Encapsulation d’au moins une cellule dans de l’hydrogel, de façon à former au moins un microcompartiment cellulaire, b) Mise en suspension dudit au moins un microcompartiment cellulaire dans une solution, préférentiellement une solution, préférentiellement d’une solution de trempage; c) Application d’une accélération centrifuge d’au moins 10g sur la suspension de l’étape b) ; d) Rinçage d’au moins un microcompartiment cellulaires obtenus à l’étape c) à l’aide d’une solution de rinçage; et e) Mise en culture d’au moins un microcompartiment issu de l’étape d). L’étape a) et b) peuvent être réalisées simultanément, la formation des microcompartiments pouvant avoir lieu directement dans la solution dans laquelle ils sont en suspension. L’étape d) de rinçage, peut être réalisée de façon à former une suspension comprenant au moins un microcompartiment cellulaire dans une solution de rinçage. Avantageusement, l’étape c) appliquant une accélération centrifuge d’au moins 10g après encapsulation permet de favoriser l’apparition d’amas cellulaires au sein des microcompartiments cellulaires avant la mise en culture des microcompartiments. Préférentiellement, l’étape c) est réalisée en appliquant une accélération centrifuge comprise entre 10 et 3000g, encore plus préférentiellement entre 50 et 1000g, notamment entre 200 et 400g. Avantageusement, l’étape c) permet de regrouper les cellules afin de former des amas sans perturber l’intégrité structurelle des microcompartiments cellulaires, ni la viabilité des cellules présentent au sein desdits microcompartiments. L’invention se rapporte ainsi à l’utilisation de l’accélération centrifuge, dans un procédé de préparation d’un microcompartiment cellulaire, par tout moyen, notamment pour regrouper les cellules au sein des microcompartiments cellulaires. De manière surprenante, le procédé selon l’invention permet de résoudre les inconvénients de l’art antérieur, en améliorant la survie et l’amplification cellulaire des cellules au sein des microcompartiments cellulaires. Selon un objet préféré, les étapes c) et d) sont réalisées à l’aide d’au moins un dispositif de filtration d’objets mésoscopiques en suspension. Préférentiellement, les étapes c) et d) sont réalisées à l’aide d’au moins un dispositif comportant un corps comprenant au moins un premier port et un deuxième port et une membrane filtrante s’étendant selon un plan P dans le corps définissant ainsi deux compartiments et apte à empêcher le passages des OCMS d’un compartiment à l’autre, le premier port étant destiné à l’injection et au soutirage des OCMS baignés dans une solution de trempage et/ou une solution de rinçage et le deuxième port étant destiné au soutirage et à l’injection de la solution de trempage et/ou de la solution de rinçage Selon un mode de réalisation particulièrement adapté, les étapes c) et d) sont réalisées à l’aide d’au moins un dispositif comportant un corps comprenant au moins un premier port et un deuxième port et une membrane filtrante s’étendant selon un plan P dans le corps définissant ainsi deux compartiments et apte à empêcher le passages des microcompartiments cellulaires d’un compartiment à l’autre, le premier port étant destiné à l’injection et au soutirage des microcompartiments cellulaire baignés dans une solution de trempage et/ou une solution de rinçage et le deuxième port étant destiné au soutirage et à l’injection de la solution de trempage et/ou de la solution de rinçage, caractérisé en ce que l’injection dans le premier port se fait selon une direction D non sensiblement orthogonale au plan P de la membrane filtrante. Selon un autre aspect, l’invention concerne également un dispositif de filtration d’objets cellulaires mesoscopiques en suspension (OCMS) comportant un corps comprenant au moins un premier port et un deuxième port et une membrane filtrante s’étendant selon un plan P dans le corps définissant ainsi deux compartiments et apte à empêcher le passages des OCMS d’un compartiment à l’autre, le premier port étant destiné à l’injection et au soutirage des OCMS baignés dans une solution de trempage et/ou une solution de rinçage et le deuxième port étant destiné au soutirage et à l’injection de la solution de trempage et/ou de la solution de rinçage. Selon un mode de réalisation particulier, l’invention concerne un dispositif comportant un corps comprenant au moins un premier port et un deuxième port et une membrane filtrante s’étendant selon un plan P dans le corps définissant ainsi deux compartiments et apte à empêcher le passages des microcompartiments cellulaires d’un compartiment à l’autre, le premier port étant destiné à l’injection et au soutirage des microcompartiments cellulaire baignés dans une solution de trempage et/ou une solution de rinçage et le deuxième port étant destiné au soutirage et à l’injection de la solution de trempage et/ou de la solution de rinçage, caractérisé en ce que l’injection dans le premier port se fait selon une direction D non sensiblement orthogonale au plan P de la membrane filtrante. Avantageusement, le dispositif selon l’invention est adapté pour la mise en œuvre des étapes c) et d) du procédé selon l’invention. En d’autres termes, le dispositif selon l’invention est donc adapté pour application d’une accélération centrifuge d’au moins 10g sur une suspension comprenant au moins un microcompartiment cellulaire et de rincer ledit au moins un microcompartiment cellulaire à l’aide d’une solution de rinçage de façon à changer le milieu de suspension dudit au moins un microcompartiment cellulaires. Le dispositif place ainsi les microcompartiments cellulaires dans des conditions optimales pour entamer la mise en culture des cellules. Selon l’invention, l’injection dans le premier port se fait selon une direction D non sensiblement orthogonale au plan P de la membrane filtrante. Avantageusement, l’injection dans le premier port est une tangentielle confinée des OCMS, préférentiellement des microcompartiments cellulaires, et permet ainsi de ne pas créer d’accumulation ni de dommages structurels des OCMS, préférentiellement des microcompartiments cellulaires. La capacité du dispositif selon l’invention à former un flux tangentiel ou un tourbillon au sein du dispositif permet de ne pas endommager les OCMS, préférentiellement des microcompartiments cellulaires, en les maintenant en mouvement, notamment lors de l’injection de la solution de rinçage. Selon une caractéristique de l’invention, la direction D est parallèle au plan P. Selon une forme de réalisation de l’invention, le corps comprend une enveloppe intérieure avec des bords ayant une forme arrondie et la section utile de la membrane filtrante a la forme d’un cercle ou d’une ellipse. La mise en œuvre de bords arrondis permet de réduire les recoins à l’intérieur du corps du dispositif limitant ainsi l’accumulation des OCMS, préférentiellement des microcompartiments cellulaires, dans les recoins et permettant d’éviter la perte d’OCMS, préférentiellement de microcompartiments cellulaires, coincés dans le dispositif lors des phases de récupération des microcompartiments cellulaires. Cela permet aussi de limiter le volume mort et donc le volume nécessaire pour rincer les OCMS, préférentiellement les microcompartiments cellulaires. Selon une autre forme de réalisation de l’invention, le corps comporte une forme torique et la section utile de la membrane filtrante a la forme d’un cercle ou d’une ellipse. Avantageusement, la forme torique permet d’augmenter l’effet de tourbillon, donc également la force centrifuge et donc la gravité pour les OCMS, préférentiellement les microcompartiments cellulaires, tout en réduisant fortement le volume mort à l’intérieur du corps limitant ainsi le volume nécessaire pour rincer les OCMS, préférentiellement les microcompartiments cellulaires. Selon une caractéristique de l’invention, toute section perpendiculaire au plan P du compartiment destiné à recevoir les OCMS, préférentiellement les microcompartiments cellulaires à une surface strictement inférieure à la surface utile de la membrane filtrante. Selon une autre caractéristique de l’invention, toute section perpendiculaire au plan P du compartiment destiné à recevoir les OCMS, préférentiellement les microcompartiments cellulaires à une surface deux fois, cinq fois et de préférence dix fois inférieure à la surface utile de la membrane filtrante. L’injection tangentielle associée à une telle différence de dimension permet d’injecter les OCMS, préférentiellement les microcompartiments cellulaires avec un certain débit, favorisant le tourbillon et donc la force centrifuge, tout en permettant la concentration d’un certain nombre de microcompartiments cellulaires à l’intérieur du corps du dispositif et de minimiser le volume mort. Selon une caractéristique de l’invention, l’injection dans le deuxième port se fait également selon une direction non orthogonale, et préférentiellement parallèle, au plan P de la membrane filtrante. La deuxième injection tangentielle permet de favoriser les flux en tourbillon, et donc la force centrifuge, à l’intérieur du corps du dispositif. Selon une autre caractéristique de l’invention, la solution de trempage est un milieu de culture adapté aux OCMS, préférentiellement un milieu de culture adapté aux microcompartiments cellulaires. Préférentiellement, la solution de trempage permet la rigidification d’au moins un hydrogel de façon à former des microcompartiments cellulaires. Les microcompartiments cellulaires sont ainsi maintenus dans un milieu favorable et ne sont pas dégradés. Selon une caractéristique de l’invention, la solution de trempage contient au moins un cation bivalent, préférentiellement choisi parmi la liste suivante : calcium, fer, barium, strontium, cuivre, plomb, aluminium, magnésium et leurs combinaisons, encore plus préférentiellement calcium, fer, barium. Selon une autre caractéristique de l’invention, la membrane filtrante comprend un microtissu recouvert d’une membrane fibrée. La mise en œuvre d’une telle membrane filtrante permet de garder un contrôle sur le type d’OCMS, préférentiellement sur le type de microcompartiment cellulaire à filtrer. Selon une autre caractéristique de l’invention, le dispositif comprend deux compartiments présentant des volumes différents. Préférentiellement, le compartiment destiné à recevoir des OCMS, préférentiellement des microcompartiments cellulaires, baignés dans une solution de trempage et/ou une solution de rinçage présente un volume supérieur au compartiment destiné à recevoir la solution de trempage et/ou de la solution de rinçage. La différence de volume permet avantageusement d’améliorer l’efficience et la quantité de microcompartiments récolté. Préférentiellement, le compartiment destiné à recevoir des microcompartiments cellulaires baignés dans une solution de trempage et/ou une solution de rinçage présente un volume au moins 50% plus important que le microcompartiment destiné à recevoir la solution de trempage et/ou de la solution de rinçage. Selon une forme de réalisation de l’invention, la membrane filtrante est apte à laisser passer d’autres OCMS, préférentiellement d’autres microcompartiments cellulaires, d’un type différent contenu dans la solution de trempage. Cette caractéristique permet notamment un filtrage d’un certain type d’OCMS, préférentiellement de microcompartiments cellulaires. L’invention concerne également un procédé d’accumulation, d’OCMS, préférentiellement de microcompartiments cellulaires comprenant les étapes suivantes : - Injection d’ OCMS, préférentiellement de microcompartiments cellulaires baignés dans la solution de trempage dans un premier port d’un dispositif selon l’invention, filtration des microcompartiments cellulaires par la membrane filtrante et récupération d’une partie de la solution de trempage par le deuxième port, - Injection de la solution de trempage dans le deuxième port et récupération des OCMS, préférentiellement des microcompartiments cellulaires, accumulés par le premier port. Selon une forme de réalisation de l’invention, le procédé d’accumulation des OCMS, préférentiellement des microcompartiments cellulaires se fait en continue. Les OCMS, préférentiellement les microcompartiments cellulaires, peuvent ainsi être collectés aussi vite qu’ils sont produits minimisant ainsi le temps de séjour dans la solution de trempage. L’invention concerne également un procédé de rinçage des OCMS, préférentiellement des microcompartiments cellulaires comprenant les étapes suivantes : - Injection de microcompartiments cellulaires baignés dans une solution de trempage dans un premier port d’un dispositif selon l’invention, filtration des microcompartiments cellulaires par la membrane filtrante et récupération de la solution de trempage et de la solution de rinçage par le deuxième port, - Injection d’une solution de rinçage dans le premier port donné destinée à remplacer la solution de trempage et récupération des deux solutions AA et de rinçage par le deuxième port. Avantageusement, le flux tangentiel réduit les dommages causés aux OCMS, préférentiellement aux microcompartiments cellulaires, en minimisant le contact avec la membrane filtrante pendant le procédé de rinçage. Selon une caractéristique de l’invention, le procédé de rinçage comprend en outre une étape d’injection de la solution de rinçage dans le deuxième port et récupération des microcompartiments cellulaires rinçés par le premier port. L’invention porte aussi sur un système d’encapsulation de cellules, le système comportant au moins deux conteneurs, l’un des conteneurs comportant une solution de cellules et l’autre des conteneurs comportant une solution apte à gélifier, un dispositif d’encapsulation comprenant une puce fluidique comportant des entrées principale et secondaire étant chacune reliée à l’un des conteneurs via un distributeur et apte à former un jet concentrique à partir des solutions fournies par les distributeurs, le dispositif d’encapsulation étant agencé de sorte que le jet se fractionne, en sortie du dispositif d’encapsulation, en gouttes dont la couche extérieure est la solution apte à gélifier et le cœur la solution de cellules, un bain de gélification agencé en aval du dispositif d’encapsulation pour collecter les gouttes formées par le dispositif d’encapsulation et agencé pour provoquer une gélification de la couche extérieure de chaque goutte lors de son immersion dans le bain, et un dispositif de filtration selon l’invention. Selon une variante de l’invention, le dispositif peut également être utilisé en tant que dispositif de filtration, préférentiellement comme dispositif de filtration d’objets cellulaires mésoscopiques en suspensions (OCMS). Selon un autre objet, l’invention concerne un dispositif de filtration d’objets cellulaires mésoscopiques en suspension (OCMS) comportant un corps comprenant au moins un premier port et un deuxième port et une membrane filtrante s’étendant selon un plan P dans le corps définissant ainsi deux compartiments et apte à empêcher le passages des OCMS d’un compartiment à l’autre, le premier port étant destiné à l’injection et au soutirage des OCMS baignés dans une solution de trempage et/ou une solution de rinçage et le deuxième port étant destiné au soutirage et à l’injection de la solution de trempage et/ou de la solution de rinçage. Bien entendu, les différentes caractéristiques, variantes et formes de réalisation de l'invention peuvent être associées les unes avec les autres selon diverses combinaisons dans la mesure où elles ne sont pas incompatibles ou exclusives les unes des autres. De plus, diverses autres caractéristiques de l'invention ressortent de la description annexée effectuée en référence aux dessins qui illustrent des formes, non limitatives, de réalisation de l'invention. Brèves descriptions des Figures : est une vue en perspective d’un exemple de réalisation d’un dispositif selon l’invention, est une vue schématique d’un exemple de réalisation d’un dispositif selon l’invention, est une vue en perspective d’un exemple de réalisation d’un dispositif selon l’invention, est une vue en demi-coupe de la selon le plan de coupe AA, est une vue en demi-coupe d’un autre exemple de réalisation de dispositif selon l’invention, et est une vue schématique d’un exemple de réalisation avec deux dispositifs selon l’invention. regroupe des photographies réalisées au microscope de l’évolution des microcompartiments cellulaires ayant subi une accélération centrifuge de 400g vs des microcompartiments cellulaires contrôles en fonction du temps. Description détaillée de l’invention Définitions Par « alginate » au sens de l’invention, on entend des polysaccharides linéaires formés à partir de β-D-mannuronate et α-L-guluronate, des sels et des dérivés de ceux-ci. Par « microcompartiment » ou « capsule » au sens de l’invention, on entend également une structure tridimensionnelle partiellement ou totalement close. Celle-ci est formée à partir d’une matrice de chaînes polymères, par exemple l’alginate contenant plusieurs cellules. La structure est ainsi constituée d’une couche externe en hydrogel rigidifiée et d’une partie interne comprenant au moins une cellule et une couche ou un maillage en hydrogel adaptée à la culture cellulaire et la croissance desdites cellules. Les cellules encapsulées peuvent prendre diverses formes, notamment des cellules uniques, des agrégats de cellules, des microtissus cellulaires, des agrégats multicellulaires, de tissus cellulaires, ou toute autre configuration permettant l'encapsulation, le confinement, ou la culture de cellules. Par ailleurs lesdits microcompartiments peuvent être conçus de manière à être pleins d’un ou plusieurs matériaux biocompatibles, tel que l’alginate, formant ainsi des billes pleines. Alternativement, lesdits microcompartiment peuvent être creux, formant ainsi une cavité interne dans laquelle les cellules peuvent être contenues ou cultivées. Par « goutte » au sens de l’invention, on entend également une structure tridimensionnel formée à partir d’au moins une solution liquide comprenant les constituants d’un hydrogel non rigidifié (précurseurs de polymérisation, chaines de polymères non ou partiellement réticulées…), d’éléments précurseurs d’hydrogel. Aussi, la goutte constitue un état transitoire entre la co-injection des différents constituants et le microcompartiment selon l’invention. Par cellules « différenciées » au sens de l’invention on entend des cellules qui présentent un phénotype particulier, par opposition à des cellules souches pluripotentes qui ne sont pas différenciées ou des cellules progénitrices qui sont en cours de différenciation. Par « cellules humaines » au sens de l’invention on entend des cellules humaines ou des cellules de mammifères non humains immunologiquement humanisées. Même lorsque cela n’est pas précisé, les cellules, les cellules souches, les cellules progénitrices et les tissus selon l’invention sont constitués ou sont obtenus à partir de cellules humaines ou à partir de cellules de mammifères non humains immunologiquement humanisées. Par « cellule progénitrice » au sens de l’invention, on entend une cellule souche déjà engagée dans la différenciation cellulaire mais pas encore différenciée. Par « cellule souche pluripotente » ou « cellule pluripotente » au sens de l’invention, on entend une cellule qui a la capacité de former tous les tissus présents dans l’organisme d’origine entier, sans pour autant pouvoir former un organisme entier en tant que tel. Les cellules souches pluripotentes humaines peuvent être appelées hPSC dans le contexte de la présente invention. Il peut s’agir en particulier de cellules souches pluripotentes induites (iPSC ou hiPSC pour les cellules souches pluripotentes induites humaines), de cellules souches embryonnaires ou de cellules MUSE (pour « Multilineage-differentiating Stress Enduring »). Par « cellule souche pluripotente induite » au sens de l’invention on entend une cellule souche pluripotente induite à la pluripotence par reprogrammation génétique de cellules somatiques différenciées. Ces cellules sont notamment positives pour les marqueurs de pluripotence, comme la coloration à la phosphatase alcaline et l’expression des protéines NANOG, SOX2, OCT4 et SSEA4/5. Des exemples de procédés permettant l’obtention de cellules souches pluripotentes induites sont décrits dans les articles Yu et al. (Science 2007, 318 (5858) : 1917-1920), Takahashi et al (Cell, 207, 131(5) : 861-872) et Nakagawa et al (Nat Biotechnol, 2008, 26(1) : 101-106). Par « couche de cellules » ou « assise de cellules » au sens de l'invention, on entend plusieurs cellules formant une couche ou une assise pouvant être structurée autour d’une lumière, il peut s’agir par exemple d’un tissu ou d’un micro-tissu cellulaire ou d’une culture groupée en trois dimensions. L’épaisseur de la couche de cellules pouvant être variable. Cette couche est organisée en trois dimensions dans le microcompartiment. Par « accélération centrifuge » au sens de l’invention, on entend l’accélération qui apparaît lorsqu'un objet ou un corps est en mouvement circulaire autour d'un point central ou le long d'une trajectoire courbe. Cette accélération est dirigée vers l'extérieur, à l'opposé du centre de rotation, et elle résulte de l'inertie de l'objet en mouvement. La force centrifuge résulte de la masse de l’objet ou du corps multipliée par cette accélération centrifuge. Ainsi, l’accélération centrifuge est liée à l’accélération acquise par un corps ou un objet sous l’effet d’une force centrifuge. Par « objets cellulaires mésoscopiques en suspension », ci-après nommés OCMS, au sens de l’invention, on entend l’ensemble d’objets dont la dimension varie entre 5µm et 5mm, qui sont en suspension et qui comprennent au moins une cellule eucaryote, encapsulée ou non. Il peut s’agir en particulier de cellules uniques, de microtissus cellulaires, d’agrégats de cellules, de tissus cellulaires, ces éléments étant ou non encapsulés dans une capsule creuse ou dans une capsule pleine. Préférentiellement ces objets sont des microcompartiments cellulaires. Par « tissu » ou « tissu biologique »au sens de l’invention, on entend le sens commun de tissu en biologie c’est-à-dire le niveau d'organisation intermédiaire entre la cellule et l’organe. Un tissu est un ensemble de cellules semblables et de même origine (le plus souvent issus d’un lignage cellulaire commun, bien qu’elles puissent trouver leur origine par association de lignages cellulaires distincts)., regroupées en amas, réseau ou faisceau (fibre). Un tissu forme un ensemble fonctionnel, c'est-à-dire que ses cellules concourent à une même fonction. Les tissus biologiques se régénèrent régulièrement et sont assemblés entre eux pour former des organes. Procédé de préparation d’un microcompartiment cellulaire La présente invention a pour objet un procédé de préparation d’un microcompartiment cellulaire en trois dimensions, caractérisé en ce qu’il comprend la mise en œuvre des étapes suivantes : - une étape d’encapsulation d’au moins une cellule dans de l’hydrogel, de façon à former au moins un microcompartiment cellulaire, - une étape de mise en suspension dudit au moins un microcompartiment cellulaire dans une solution, préférentiellement une solution de trempage; et - au moins une étape appliquant une accélération centrifuge d’au moins 10 g sur au moins une cellule et/ou au moins un microcompartiment cellulaire. L’étape d’encapsulation d’au moins une cellule dans de l’hydrogel peut être réalisée simultanément à la mise en suspension du ou des microcompartiments cellulaires dans la solution. Avantageusement, le procédé selon l’invention permet d’utiliser l’effet centrifuge, par tout moyen, pour optimiser les conditions de cultures dans un système en trois dimensions. Dans le contexte de l’invention, l’accélération centrifuge exercée sur au moins une cellule et/ou au moins un microcompartiment cellulaire peut être calculée par la formule suivante : où R est le rayon de la trajection exprimé en mètre, Ω est la vitesse angulaire exprimée en radian par seconde et G est l’accélération centrifuge exprimée en m.s -2 Préférentiellement, l’accélération centrifuge appliquée sur au moins une cellule et/ou au moins un microcompartiment est comprise entre 10 et 3000g, encore plus préférentiellement entre 50 et 1000, notamment entre 200 et 400g. Selon un mode de réalisation, l’accélération centrifuge appliquée sur au moins une cellule et/ou au moins un microcompartiment est comprise entre 10 et 500g, préférentiellement entre 10 et 400g. Selon un mode de réalisation, l’application de l’accélération centrifuge est réalisée par centrifugation, notamment à l’aide d’une centrifugeuse. Selon un autre mode de réalisation, l’application de l’accélération centrifuge est réalisée à l’aide d’un dispositif de filtration. Selon un mode de réalisation, le procédé selon l’invention comprend la mise en œuvre des étapes suivantes : a) Encapsulation d’au moins une cellule dans de l’hydrogel, de façon à former au moins un microcompartiment cellulaire, b) Mise en suspension dudit au moins un microcompartiment cellulaire dans une solution, préférentiellement une solution, préférentiellement d’une solution de trempage; c) Application d’une accélération centrifuge d’au moins 10g sur la suspension de l’étape b) ; d) Rinçage d’au moins un microcompartiment cellulaires obtenus à l’étape c) à l’aide d’une solution de rinçage; et e) Mise en culture d’au moins un microcompartiment issu de l’étape d). L’étape a) et b) peuvent être réalisées simultanément, la formation des microcompartiments pouvant avoir lieu directement dans la solution dans laquelle ils sont en suspension. L’étape d) de rinçage, peut être réalisée de façon à former une suspension comprenant au moins un microcompartiment cellulaire dans une solution de rinçage. Préférentiellement, au moins un microcompartiment cellulaire en trois dimensions obtenu à l’issu de l’étape a) est creux en ce sens qu’il présente une couche externe et une partie interne creuse pouvant contenir des éléments tels que par exemple une solution, de la matrice extracellulaire ou un substitut de matrice extracellulaire et/ou une ou plusieurs cellules. De façon préférée, au moins un microcompartiment obtenu à l’issu de l’étape a) présente une couche externe en hydrogel et une partie interne comprenant au moins une cellule. Selon un mode de réalisation, le microcompartiment obtenu à l’issu de l’étape a) présente une couche externe en hydrogel et une partie interne comprenant une matrice interne et au moins une cellule. Préférentiellement la matrice interne est une matrice extracellulaire ou substitut de matrice extracellulaire. Le microcompartiment cellulaire issu de l’étape a) comprend au moins une cellule encapsulée dans de l’hydrogel, ledit hydrogel étant biocompatible, c’est-à-dire qu’il n’est pas toxique pour les cellules. L’hydrogel doit permettre la diffusion d’oxygène et de nutriment pour alimenter les cellules contenues dans le microcompartiment et permettre leur survie. Selon un mode de réalisation particulièrement préféré, la couche externe d’hydrogel du microcompartiment issu de l’étape a) comprend au moins de l’alginate. Selon un mode de réalisation particulier, la couche externe en hydrogel du microcompartiment issu de l’étape a) peut être constitué exclusivement d’alginate. L’alginate peut être en particulier un alginate de sodium, composé à 80% d’α-L-guluronate et 20% de β-D-mannuronate, ayant un module de Young supérieur à 10kPa, préférentiellement supérieur à 60 kPa, plus préférentiellement supérieur à 100 kPa. Selon un mode de réalisation, la couche externe en hydrogel du microcompartiment issu de l’étape a) comprend de l’alginate, ledit alginate présentant avantageusement un poids moléculaire moyen de 100 à 400 kDa, plus préférentiellement la couche externe présente un poids moléculaire compris entre 150 et 250kDa. Lorsque l’hydrogel de la couche externe du microcompartiment issu de l’étape a) est de l’alginate, la concentration de la solution d’alginate destinée à former ladite couche externe du microcompartiment, est préférentiellement comprise entre 0,5 et 5% en masse, plus préférentiellement la concentration est égale à 2% (plus ou moins 0,5%) en masse. Lorsque la concentration de la solution d’alginate destinée à former la couche externe du microcompartiment de l’étape a) est égale à 2%, la viscosité de l’alginate est préférentiellement égale à 144mPa/s. Avantageusement, la couche externe en hydrogel du microcompartiment issu de l’étape a) est dépourvue de cellules. La couche externe d’hydrogel du microcompartiment issu de l’étape a) permet ainsi de protéger les cellules du milieu extérieur, de limiter la prolifération incontrôlée des cellules, et leur différenciation en cas de différenciation. Dans le contexte de l’invention, les cellules présentes dans le microcompartiment issu de l’étape a) peuvent être tout type de cellules, en particulier les cellules sont des cellules eucaryotes. Plus préférentiellement, les cellules sont des cellules humaines ou végétale ou animales. Dans un mode de réalisation particulier, le microcompartiment issu de l’étape a) comprend des cellules souches pluripotentes. Une cellule souche pluripotente, ou cellule pluripotente, s’entend d’une cellule qui a la capacité de former tous les tissus présents dans l’organisme d’origine entier, sans pour autant pouvoir former un organisme entier en tant que tel. Les cellules souches pluripotentes peuvent être en particulier des cellules souches pluripotentes induites (iPS), des cellules MUSE (« Multilineage-differentiating Stress Enduring ») que l’on trouve dans la peau et la moelle osseuse des mammifères adultes, ou des cellules souches embryonnaires (ES). Selon un mode de réalisation, le microcompartiment selon l’invention ne comprend pas de cellules souche embryonnaires (ES). Selon une variante particulièrement adaptée de l’invention, le microcompartiment issu de l’étape a) comprend des cellules souches pluripotentes induites humaines ou animales. Dans un autre mode de réalisation particulier, le microcompartiment issu de l’étape a) comprend des cellules multipotentes humaines ou animales et/ou des cellules progénitrices humaines ou animales issues de ces cellules multipotentes et/ou des cellules en cours de différenciation. Les cellules multipotentes et/ou progénitrices ont préférentiellement été obtenues à partir de cellules souches pluripotentes, en particulier de cellules souches pluripotentes humaines, ou éventuellement à partir de cellules humaines non pluripotentes dont le profil transcriptionnel a été modifié artificiellement pour rejoindre celui de cellules multipotentes et/ou de progéniteurs particuliers, typiquement par expression forcée de facteurs de transcriptions spécifiques du phénotype cellulaire cible. Préférentiellement, les cellules multipotentes et/ou progénitrices ont été obtenues à partir de cellules souches pluripotentes après mise en contact avec une solution capable d’initier la différenciation desdites cellules souches. Selon une autre variante, le microcompartiment issu de l’étape a) comprend des cellules différenciées humaines ou animales. Les cellules différenciées ont préférentiellement été obtenues à partir de cellules souches pluripotentes ou de cellules progénitrices, en particulier de cellules souches pluripotentes humaines ou de cellules progénitrices humaines, ou éventuellement à partir de cellules humaines non pluripotentes dont le profil transcriptionnel a été modifié artificiellement pour rejoindre celui de cellules différenciées particulières, typiquement par expression forcée de facteurs de transcriptions spécifiques du phénotype cellulaire cible. Préférentiellement, les cellules différenciées ont été obtenues à partir de cellules souches pluripotentes ou multipotentes ou progénitrices après mise en contact avec une solution capable d’initier la différenciation desdites cellules souches. Selon une variante, le contenu cellulaire du microcompartiment comprend des identités cellulaires homogènes ou mixtes. Les cellules différenciées peuvent en particulier se présenter sous forme d’au moins une couche de cellules ou sous forme d’un tissu, d’un agrégat cellulaire ou d’un micro-tissu en trois dimensions ou sous forme de plusieurs tissus ou micro-tissus dans le microcompartiment. Il peut s’agir d’un tissu ou micro-tissu compacté ou non, avec ou sans lumière. Le microcompartiment issu de l’étape a) peut donc comprendre plusieurs types de cellules. En particulier, le microcompartiment issu de l’étape a) peut comprendre par exemple des cellules souches induites à la pluripotence et/ou des cellules multipotentes et/ou des cellules progénitrices et/ou en cours de différenciation et/ou des cellules différenciées. Selon une variante, le microcompartiment issu de l’étape a) comprend : - une couche externe en hydrogel, et - une partie interne comprenant au moins : * au moins une couche de cellules, et * une couche ou un maillage en hydrogel agencé entre la couche externe et la couche de cellules. Selon cette variante, la couche ou le maillage de la partie interne en hydrogel, préférentiellement en alginate, peut comprendre d’autres constituants, ainsi ladite couche ou maillage de la partie interne en hydrogel comprend préférentiellement au moins une séquence peptidique, plus préférentiellement une séquence peptidique d’intérêt apte à interagir avec les cellules constituant notamment la couche de cellules présentes dans le microcompartiment issu de l’étape a). A titre d’exemple la séquence peptidique peut être un peptide, ou une protéine. Selon un objet particulièrement préféré, la séquence peptidique est un motif YIGSR et/ou un motif RGD. Le motif YIGSR est un peptide issu de la chaîne β1 de la laminine de séquence Tyrosine-Isoleucine-Glycine-Serine-Arginine facilitant l’adhésion cellulaire à la couche ou maillage de la partie interne en hydrogel. Le motif RGD est un peptide de séquence Arginine-Glycine-Asparagine facilitant également l’adhésion cellulaire à la ou maillage de la partie interne en hydrogel. Selon la même variante, la couche ou le maillage de la partie interne en hydrogel peut comprendre au moins un deuxième hydrogel distinct du premier hydrogel de la couche ou du maillage de la partie interne, plus préférentiellement celui-ci est choisi parmi la fibrine, la laminine, la fibronectine, l'entactine, l'acide hyaluronique, et le collagène. Le microcompartiment obtenu à l’issu de l’étape a) est alors un microcompartiment en trois dimensions, délimité par la couche externe en hydrogel et à l’intérieur de ladite couche externe, une partie interne comprend au moins une cellule et la couche ou le maillage en hydrogel. Le microcompartiment de l’étape a) se présente préférentiellement sous différentes formes sphériques ou sensiblement sphériques. Avantageusement, le microcompartiment en trois dimensions est creux, plus préférentiellement, le microcompartiment creux se présente sous la forme d’un ovoïde, d’un cylindre, d’un sphéroïde, d’une sphère ou d’une larme ou sous une forme sensiblement ovoïde, sensiblement cylindrique, sensiblement sphéroïde, sensiblement sphérique ou sensiblement sous la forme d’une larme. D’une part, la couche externe d’hydrogel permet de protéger les cellules du milieu extérieur, de limiter la prolifération incontrôlée des cellules, ainsi que leur différenciation en cas de différenciation ; d’autre part, la présence éventuelle d’une couche ou maillage dans la partie interne d’hydrogel et/ou la matrice extracellulaire et/ou substitut de matrice extracellulaire, permet de fournir un environnement adapté pour la croissance des cellules et leur multiplication. Selon un mode de réalisation, l’étape a) et/ou b) comprend la rigidification de l’hydrogel. Préférentiellement la rigidification est réalisée à l’étape b) dans une solution de rigidification ou bain ou solution de trempage. Préférentiellement, le procédé selon l’invention comprend les étapes suivantes : -a) mettre en contact au moins une cellule et une solution d’hydrogel destinée à former une couche externe pour former au moins une goutte, et -b) collecter la goutte obtenue dans une solution de trempage apte à rigidifier ladite solution d’hydrogel pour former la couche externe de chaque microcompartiment. Une fois la couche externe en hydrogel rigidifiée par la solution de trempage, le microcompartiment est formé. Selon un mode de réalisation, l’étape a) d’encapsulation est réalisée par co-injection de deux ou trois solutions : -une solution d’hydrogel ; -éventuellement une solution intermédiaire isotonique ; -une solution comprenant des cellules, du milieu de culture et éventuellement de la matrice extracellulaire et/ou un substitut de matrice extracellulaire, de manière concentrique via un injecteur microfluidique qui permet de former un jet en sortie d’injecteur constitué du mélange des solutions, ledit jet se fractionnant en gouttes, lesdites gouttes étant des microcompartiments cellulaires au sens de l’invention. Dans ce mode de réalisation, à l’étape b) les gouttes formées à l’étape a) sont collectées dans une solution de trempage qui rigidifie la solution d’hydrogel pour former la couche externe de chaque microcompartiment, la partie interne de chaque goutte étant constituée par la solution comprenant les cellules, du milieu de culture et la matrice extracellulaire. Ainsi, selon un mode de réalisation préféré, le procédé selon l’invention comprend la mise en œuvre des étapes suivantes : a) Encapsulation d’au moins une cellule dans de l’hydrogel de façon à former une suspension comprenant au moins un microcompartiment cellulaire dans une solution de trempage, ladite encapsulation est réalisée par co-injection de deux ou trois solutions : -une solution d’hydrogel ; -éventuellement une solution intermédiaire isotonique ; -une solution comprenant des cellules, du milieu de culture et éventuellement de la matrice extracellulaire et/ou un substitut de matrice extracellulaire, de manière concentrique via un injecteur microfluidique qui permet de former un jet en sortie d’injecteur constitué du mélange des solutions, ledit jet se fractionnant en gouttes, b) collecte desdites gouttes dans une solution de trempage qui rigidifie la solution d’hydrogel pour former la couche externe de chaque microcompartiment, la partie interne de chaque goutte étant constituée par la solution comprenant les cellules, du milieu de culture et éventuellement de la matrice extracellulaire ; c) Application d’ une accélération centrifuge d’au moins 10g sur la suspension comprenant les microcompartiments cellulaires obtenus à l’étape b) ; d) Rinçage d’au moins un microcompartiment cellulaires obtenus à l’étape c) à l’aide d’une solution de rinçage ; et e) Mise en culture d’au moins un microcompartiment issu de l’étape d). Dans ce mode de réalisation, la solution intermédiaire isotonique de l’étape a) d’encapsulation est préférentiellement une solution de sorbitol. Dans le même mode de réalisation, le diamètre d’ouverture finale de l’injecteur microfluidique de l’étape a) d’encapsulation est préférentiellement compris entre 50 et 800 µm, préférentiellement entre 80 et 240 µm, et le débit de chacune des solutions est compris entre 0,1 et 2000 mL/h, préférentiellement entre 10 et 2000 mL/h, plus préférentiellement entre 11 et 100 mL/h. Selon un mode de réalisation, la solution de l’étape b) comprend au moins un cation divalent capable de rigidifier l’hydrogel de la couche externe, préférentiellement un cation choisi parmi calcium, fer, barium, strontium, cuivre, plomb, aluminium, magnésium, et leurs combinaisons, préférentiellement calcium, fer, barium, encore plus préférentiellement le calcium. L’étape c) consiste en l’application d’une accélération centrifuge d’au moins 10g sur la suspension obtenue à l’étape b). Préférentiellement, l’étape c) est réalisée en appliquant une accélération centrifuge comprise entre 10 et 3000g, encore plus préférentiellement comprise entre 200 et 400g. Selon un autre mode de réalisation, l’étape c) consiste à application d’une accélération centrifuge comprise entre 10 et 500g, préférentiellement entre 10 et 400g. Avantageusement, l’étape c) permet de regrouper les cellules présentes au sein du microcompartiment afin de rendre homogène leur répartition diminuant le nombre de cellules isolées sans dégrader la structure des microcompartiments, ni diminuer la viabilité des cellules au sein des microcompartiments. Selon un mode de réalisation, l’application de l’accélération centrifuge est réalisée par centrifugation, notamment à l’aide d’une centrifugeuse. Préférentiellement, lorsque l’accélération centrifuge est réalisée par centrifugation, l’étape c) est réalisée pendant une durée comprise entre 2 et 20 minutes, encore plus préférentiellement entre 5 et 10 minutes. L’étape c) est réalisée à une température adaptée au type d’hydrogel utilisé et à l’utilisation envisagée. L’Homme du métier peut adapter la température en fonction de l’hydrogel. A titre d’exemple, lorsque l’hydrogel est thermosensible, la centrifugation est réalisée à 4 degrés Celsius. Selon un autre mode de réalisation, l’application de l’accélération centrifuge est réalisée à l’aide d’un dispositif de filtration. L’application d’une étape appliquant une accélération centrifuge d’au moins 10g sur au moins une cellule et/ou au moins un microcompartiment tel que l’étape b) est particulièrement avantageux, et ce, à tout moment du procédé de préparation d’un microcompartiment cellulaire en trois dimensions. Avantageusement, l’étape c) située après l’encapsulation et avant la mise en culture permet de favoriser la formation d’amas ou d’agrégats cellulaires au sein des microcompartiments avant la mise en culture afin d’améliorer la survie et la croissance cellulaire ainsi que l’apparition d’une meilleure structuration des cellules pour l’initiation de l’amplification en 3D. De façon préférée, les microcompartiments cellulaires obtenus à l’issu de l’étape c) comprennent moins de 5% de cellules uniques en nombre de la totalité des cellules encapsulées, préférentiellement moins de 1%. En effet, dans le contexte de l’invention, il est préférable que les cellules encapsulées soient sous forme d’amas afin d’optimiser l’amplification et d’améliorer la survie des cellules. L’étape c) permet avantageusement de forcer les cellules à s’organiser en amas avant l’étape de mise en culture. Ainsi, l’étape c) permet d’uniformiser la structure des cellules au sein du microcompartiment diminuant drastiquement le pourcentage de cellules isolées. Avantageusement, l’accélération centrifuge d’au moins 10g de l’étape c) est adaptée pour favoriser l’apparition d’amas cellulaire sans affecter la viabilité cellulaire. L’étape d) permet quant à elle de remplacer la solution de trempage par la solution de rinçage. L’étape de rinçage peut être effectuée par tout moyen adapté à la survie des cellules. La solution de rinçage de l’étape d) est un milieu adapté aux cellules présentes dans le microcompartiment selon les connaissances de l’homme du métier. Selon un autre mode de réalisation, les étapes c) et d) sont réalisées à l’aide d’au moins un dispositif comportant un corps comprenant au moins un premier port et un deuxième port et une membrane filtrante s’étendant selon un plan P dans le corps définissant ainsi deux compartiments et apte à empêcher le passages des microcompartiments cellulaire d’un compartiment à l’autre, le premier port étant destiné à l’injection et au soutirage des microcompartiments cellulaire baignés dans une solution de trempage et/ou une solution de rinçage et le deuxième port étant destiné au soutirage et à l’injection de la solution de trempage et/ou de la solution de rinçage, caractérisé en ce que l’injection dans le premier port se fait selon une direction D non sensiblement orthogonale au plan P de la membrane filtrante. Selon un mode de réalisation, les étapes c) et d) sont réalisées en continu à l’aide d’au moins 2 dispositifs selon l’un des quelconques modes de réalisation précédents. Préférentiellement, lorsque les étapes c) et d) sont réalisées en continu à l’aide d’au moins 2 dispositifs selon l’un des quelconques modes de réalisation précédents, lesdits dispositifs sont disposés en série. Selon un mode de réalisation, le procédé de préparation d’un microcompartiment cellulaire en trois dimensions comprends la mise en œuvre des étapes suivantes : a’) Application d’ une accélération centrifuge d’au moins 10g sur une suspension comprenant au moins une cellule ; a) Encapsulation d’au moins une cellule issues de l’étape a’) dans de l’hydrogel de façon à former au moins un microcompartiment cellulaire; b) Mise en suspension dudit au moins un microcompartiment cellulaire dans une solution, préférentiellement dans une solution de trempage; c) Optionnellement, application d’ une accélération centrifuge d’au moins 10g sur la suspension issue de l’étape b) ; d) Rinçage d’au moins un microcompartiment cellulaires obtenus à l’étape b) ou c) à l’aide d’une solution de rinçage; et d) Mise en culture d’au moins un microcompartiment issu de l’étape d). Avantageusement, en fonction des caractéristiques de l’hydrogel et des contraintes spécifiques des cellules, le procédé peut comprendre une étape a’) en amont de l’étape a) d’encapsulation. Ainsi, les cellules vont former des amas en amont de l’encapsulation. Selon un mode de réalisation, l’étape a’) est réalisée sur une suspension comprenant au moins une cellule et un milieu de culture. Préférentiellement, le milieu de culture de l’étape a’) est un milieu de culture est un milieu adapté aux cellules présentes dans le microcompartiment selon les connaissances de l’homme du métier. Selon un mode de réalisation particulier de l’invention, le procédé comprend la mise en œuvre des étapes suivantes : a’) Application d’ une accélération centrifuge d’au moins 10g sur une suspension comprenant au moins une cellule ; a) Encapsulation d’au moins une cellule issues de l’étape a’) dans de l’hydrogel de façon à former au moins un microcompartiment cellulaire, au moins un microcompartiment étant délimité par une couche externe en hydrogel et à l’intérieur de ladite couche externe, une partie interne comprend au moins une cellule et une couche ou un maillage en hydrogel comprenant un hydrogel choisi parmi la fibrine, la laminine, la fibronectine, l'entactine, l'acide hyaluronique, et le collagène ; b) Mise en suspension dudit au moins un microcompartiment cellulaire dans une solution, préférentiellement dans une solution de trempage; c) Optionnellement, application d’ une accélération centrifuge d’au moins 10g sur la suspension issue de l’étape b) ; d) Rinçage d’au moins un microcompartiment cellulaires obtenus à l’étape b) ou c) à l’aide d’une solution de rinçage; et e) Mise en culture d’au moins un microcompartiment issu de l’étape d). Avantageusement, ce mode de réalisation du procédé selon l’invention permet de faciliter le regroupement des cellules avant gélification de l’hydrogel de la partie interne. Selon un mode de réalisation, lorsque au moins un microcompartiment issu de l’étape a) comprend une matrice interne, le procédé selon l’invention comprend une étape x) de gélification de la matrice interne, réalisée après l’étape b) ou c). Préférentiellement, l’étape x) de gélification de la matrice interne est réalisée à l’aide d’au moins un facteur polymérisant choisi parmi, la température, une enzyme, un réactif chimique tel que la thrombine et leurs combinaisons. Ainsi, selon un mode de réalisation, le procédé selon l’invention comprend la mise en œuvre des étapes suivantes : a) Encapsulation d’au moins une cellule dans de l’hydrogel de façon à former au moins un microcompartiment cellulaire, ledit au moins un microcompartiment cellulaire comprenant une couche externe en hydrogel et une partie interne comprenant une matrice interne et au moins une cellule ; b) Mise en suspension dudit au moins un microcompartiment cellulaire dans une solution, préférentiellement dans une solution de trempage; c) Application d’une accélération centrifuge d’au moins 10g sur la suspension de l’étape b) ; x) Gélification de la partie interne d’au moins un microcompartiment cellulaire issu de l’étape c) à l’aide d’au moins un facteur polymérisant choisi parmi, la température, une enzyme, un réactif chimique et leurs combinaisons ; d) Rinçage d’au moins un microcompartiment cellulaires obtenus à l’étape x) à l’aide d’une solution de rinçage de façon à former une suspension comprenant au moins un microcompartiment cellulaire dans une solution de de rinçage ; et e) Mise en culture d’au moins un microcompartiment issu de l’étape d). Selon un mode de réalisation particulier, la matrice interne est exposée à au moins un facteur polymérisant avant l’étape c) et l’étape de gélification de la matrice interne est réalisée après l’étape c). Avantageusement, le processus de gélification de la matrice interne peut-être suffisamment long ou retardé pour permettre de réaliser l’étape c) sans que la matrice interne ne soit gélifiée, bien que l’exposition à au moins un facteur polymérisant ait été réalisée avant l’étape c). Selon un autre mode de réalisation préféré, le procédé comprend la mise en œuvre des étapes suivantes : a) Encapsulation d’au moins une cellule dans de l’hydrogel de façon à former au moins un microcompartiment cellulaire, ledit au moins un microcompartiment étant délimité par la couche externe en hydrogel, et à l’intérieur de ladite couche externe, une partie interne comprend au moins une cellule et une couche ou un maillage en hydrogel comprenant de la fibrine ; b) Mise en suspension dudit au moins un microcompartiment cellulaire dans une solution, préférentiellement dans une solution de trempage; c) Application d’une accélération centrifuge d’au moins 10g sur la suspension issue de l’étape b) ; x) Ajout de thrombine dans la suspension obtenues à l’issue de l’étape c) de façon à gélifier au moins une partie de la partie interne d’au moins un microcompartiment cellulaire ; d) Rinçage d’au moins un microcompartiment cellulaires obtenus à l’étape x) à l’aide d’une solution de rinçage de façon à former une suspension comprenant au moins un microcompartiment cellulaire dans une solution de de rinçage ; et e) Mise en culture d’au moins un microcompartiment issu de l’étape d). La thrombine est un agent de polymérisation capable de traverser la couche externe en hydrogel du microcompartiment cellulaire afin de polymériser la fibrine. Selon un autre mode de réalisation, le procédé selon l’invention comprend comprends la mise en œuvre des étapes suivantes : a) Encapsulation d’au moins une cellule dans de l’hydrogel de façon à former au moins un microcompartiment cellulaire; b) Mise en suspension dudit au moins un microcompartiment cellulaire dans une solution, préférentiellement dans une solution de trempage; c) Optionnellement, application d’une accélération centrifuge d’au moins 10g sur la suspension obtenue à l’issue de l’étape b) ; d) Rinçage d’au moins un microcompartiment cellulaires obtenus à l’étape b) ou c) à l’aide d’une solution de rinçage de façon à former une suspension comprenant au moins un microcompartiment cellulaire dans une solution de de rinçage ; et e) Mise en culture d’au moins un microcompartiment issu de l’étape d) dans une solution; et e') Centrifugation de la solution de l’étape e) comprenant un microcompartiment ou centrifugation d’au moins un microcompartiment issu de l’étape e). Avantageusement, le procédé selon l’invention peut comprendre une étape de centrifugation après mise en culture. L’étape e’) est particulièrement avantageuse dans la mesure où elle permet de favoriser la dissociation des complexes cellulaires en 3D formés lors de l’étape e) de mise en culture. Selon un mode de réalisation particulier de l’invention, le procédé selon l’invention comprend la mise en œuvre des étapes suivantes : a’) Application d’ une accélération centrifuge d’au moins 10g sur une suspension comprenant au moins une cellule ; a) Encapsulation d’au moins une cellule issue de l’étape a’) dans de l’hydrogel de façon à former une suspension comprenant au moins un microcompartiment cellulaire dans une solution de trempage ; b) Mise en suspension dudit au moins un microcompartiment cellulaire dans une solution, préférentiellement dans une solution de trempage; c) Application d’une accélération centrifuge d’au moins 10g sur la suspension issue de l’étape b) ; d) Rinçage d’au moins un microcompartiment cellulaires obtenu à l’étape c) à l’aide d’une solution de rinçage ; et e) Mise en culture d’au moins un microcompartiment issu de l’étape d) ; et e’) Centrifugation d’au moins un microcompartiment issu de l’étape e). Préférentiellement, dans les modes de réalisation du procédé selon l’invention, les étapes a’) et/ou c) et/ou d) et/ou e’) sont mises en œuvre à l’aide d’un dispositif selon l’invention tel que décrit en suivant. Dispositif Il est à noter que sur les figures les éléments structurels et/ou fonctionnels communs aux différentes variantes peuvent présenter les mêmes références. Le dispositif selon l’invention est apte à réaliser au moins une partie du procédé selon l’invention. En particulier, le dispositif est apte à appliquer une accélération centrifuge d’au moins 10g sur au moins une cellule et/ou au moins un microcompartiment. De façon particulièrement avantageusement, le dispositif selon l’invention est adapté pour la mise en œuvre des étapes a’) et/ou c) et/ou d) et/ou e’) du procédé selon l’invention. Selon une variante, le dispositif vise à filtrer des d’objets cellulaires mesoscopiques en suspension, dits OCMS. A ces fins, l’invention désignée par la référence 1 dans son ensemble et illustrée à la concerne un dispositif de filtration comprenant un corps 2 comportant une membrane filtrante 3 qui s’étend dans le corps 2 selon un plan P. Selon l’invention, le corps 2 du dispositif de filtration 1 comprend une enveloppe intérieure 4 comportant des bords arrondis. Selon une forme de réalisation de l’invention notamment illustrée aux figures 2 et 5, l’enveloppe intérieure 4 a la forme d’un burger, c’est-à-dire une forme cylindrique avec une surface de bord supérieur arrondie et une surface de bord inférieur arrondie. Selon la forme de réalisation illustrée aux figures 3 et 4, l’enveloppe intérieure 3 du corps 2 a la forme d’un donut, c’est-à-dire une forme torique. Selon la forme de réalisation illustrée à la , le dispositif de filtration 1 est symétrique par rapport à la membrane filtrante 3. D’autres formes de réalisation non symétriques illustrées aux figures 3, 4 et 5 sont également compatibles avec l’invention. Par exemple, la partie destinée à recevoir des OCMS, préférentiellement des microcompartiments cellulaires peut comprendre des dimensions volumiques plus importantes que la partie de l’autre côté de la membrane filtrante 3 ou inversement. La membrane filtrante 3 s’étend selon un plan P dans le corps 2 du dispositif de filtration 1. La membrane filtrante 3 s’étend à jusqu’aux bords de l’enveloppe intérieure 4 du corps 2 du dispositif de filtration 1. Selon les formes de réalisation illustrées, la section utile de la membrane filtrante 3 a la forme d’un cercle. Selon d’autres formes de réalisation non illustrées, la section utile de la membrane filtrante 3 a la forme d’une ellipse. Afin de retenir les OCMS, préférentiellement les microcompartiments cellulaires, la membrane filtrante 3 comprend une membrane fibrée apte à empêcher le passage des OCMS, préférentiellement des OCMS, préférentiellement des microcompartiments cellulaires. La membrane filtrante 3 est donc adaptée selon le type d’OCMS, préférentiellement selon le type de microcompartiments cellulaires, mis en œuvre. Les OCMS, préférentiellement les microcompartiments cellulaires, baignent préférentiellement dans une solution de trempage qui peut être un milieu de culture. Avantageusement, la solution de trempage comprend des éléments permettant la rigidification de l’hydrogel. Par exemple, si les OCMS sont des micrcompartiments cellulaires constitués notamment par une couche externe en alginate ou formant des billes pleines d’alginate, la solution de trempage comprend préférentiellement des ions calcium sous forme de chlorure de calcium qui permettent la rigidification de l’alginate. Selon une forme de réalisation de l’invention, la membrane filtrante 3 comprend un microtissu recouvert d’une membrane fibrée. La membrane fibrée contient un matériau de type textile à maille large (mesh), nylon, ou encore PET. D’autres matériaux filtrants les OCMS, préférentiellement les microcompartiments cellulaires, sont utilisés dans le cadre de l’invention. Selon une forme de réalisation de l’invention, la membrane filtrante 3 est apte à filtrer au moins un type d’OCMS, préférentiellement au moins un type de microcompartiments cellulaires, et est également apte à laisser passer un autre type d’OCMS, préférentiellement au moins un autre type de microcompartiment cellulaire. Le maillage peut ainsi être adapté selon les dimensions des microcompartiments cellulaires à filtrer. Le corps 2 du dispositif de filtration 1 comprend un premier port 5 destiné à une injection tangentielle des OCMS, préférentiellement des microcompartiments cellulaires, baignés dans une solution de trempage. Le premier port 5 comprend à ses fins une forme cylindrique qui s’étend sensiblement selon une direction D appartenant à un plan P’ parallèle au plan P de la membrane filtrante 3 tel qui l’apparait à la . Le deuxième port 6 est situé dans la deuxième partie du corps 2, de l’autre côté de la membrane filtrante 3. Selon la forme de réalisation illustrée aux figures 1 et 2, le deuxième port 6 ne permet pas une injection tangentielle dans le corps 2 du dispositif de filtration 1. Selon la forme de réalisation notamment illustrée aux figures 3, 4 et 5 deuxième port 6 est également apte à une injection tangentielle dans le corps 2 du dispositif de filtration 1. Selon la forme de réalisation illustrée à la , le premier port 5 comprend une entrée 7 et un canal d’injection 8. Le canal d’injection 8 permet une injection tangentielle dans l’enveloppe intérieure 4 du corps 2 du dispositif de filtration 1. Selon d’autres formes de réalisation non illustrées, le corps 2 du dispositif de filtration 1 comprend plus de deux ports d’entrée et sortie permettant ainsi l’injection de différents types de solution ou d’OCMS, préférentiellement de microcompartiments cellulaires, de chaque côté de la membrane filtrante 3. Le dispositif de filtration 1 selon l‘invention est utilisé pour différentes fonctions. Le dispositif de filtration 1 est notamment utilisé pour divers procédés tels que l’accumulation et/ou le rinçage d’OCMS, préférentiellement de microcompartiments cellulaires. Une première utilisation du dispositif de filtration 1 porte sur un procédé d’accumulation d’OCMS, préférentiellement de microcompartiments cellulaires. Une première étape du procédé d’accumulation de microcompartiments cellulaires consiste en l’injection d’OCMS baignés dans la solution de trempage dans le premier port 5 du dispositif selon l’invention. L’injection se fait selon un débit Q1 pendant un temps T1. Par exemple, le débit Q1 vaut 130mL/mn et le temps T1 vaut 45 s. Les OCMS, préférentiellement de microcompartiments cellulaires, sont arrêtés par la membrane filtrante 3. Une partie de la solution de trempage est évacuée par le deuxième port 6 du dispositif de filtration 1. Une deuxième étape du procédé d’accumulation d’OCMS, préférentiellement de microcompartiments cellulaires consiste en une inversion du flux. Pour se faire, l’injection de la solution de trempage précédemment évacuée se fait dans le deuxième port 6. Les OCMS, préférentiellement les microcompartiments cellulaires accumulés dans le dispositif de filtration 1 lors de la première étape du procédé d’accumulation d’OCMS, préférentiellement de microcompartiments cellulaires, sont alors récupérées par le premier port 5. Un tel procédé d’accumulation d’OCMS, préférentiellement de microcompartiments cellulaires, utilisant le dispositif de filtration 1 selon l’invention peut avantageusement être en continue en répétant les deux étapes décrites. Une deuxième utilisation du dispositif de filtration 1 selon l’invention concerne un procédé de rinçage d’OCMS, préférentiellement de microcompartiments cellulaires. Une première étape du procédé de rinçage des OCMS, préférentiellement des microcompartiments cellulaires, consiste en l’injection de microcompartiments cellulaires baignés dans une solution de trempage dans le premier port 5 du dispositif de filtration 1 selon un débit Q2, et la filtration des OCMS, préférentiellement des microcompartiments cellulaires par la membrane filtrante 3 et la récupération d’une partie de la solution de trempage par le deuxième port 6 pendant un temps T2. Par exemple, le débit Q2 vaut 260 mL/mn et le temps T2 vaut 15 s. Une deuxième étape du procédé de rinçage des OCMS, préférentiellement de microcompartiments cellulaires, consiste en l’injection d’une solution de rinçage dans le premier port 5 selon un débit Q3 pendant un temps T3 donné, la solution de rinçage remplaçant alors la solution de trempage et récupération de la solution de trempage mélangé à la solution de rinçage puis de la solution de rinçage seule par le deuxième port 6. Par exemple, le débit Q3 vaut 250 ml/mn et le temps T3 vaut 20 s. Une troisième étape consiste en l’inversion du flux avec l’injection dans le deuxième port 6 de la solution de rinçage selon un débit Q4 et de la récupération des OCMS, préférentiellement des microcompartiments cellulaires, rinçés par le premier port 5 pendant un temps T4. Par exemple, le débit Q4 vaut 250 mL/mn et le temps T4 vaut 10 s. Un tel procédé de rinçage d’OCMS, préférentiellement de microcompartiments cellulaires, utilisant le dispositif de filtration 1 selon l’invention peut avantageusement être en continue en répétant les trois étapes décrites. La illustre la mise en œuvre des deux procédés décrits ci-dessus en série. Un premier dispositif de filtration 1 est utilisé pour un procédé d’accumulation des OCMS, préférentiellement des microcompartiments cellulaires, et un deuxième dispositif de filtration est utilisé pour un procédé de rinçage des OCMS, préférentiellement des microcompartiments cellulaires. Deux dispositifs de filtration 1 interviennent pour accumuler les OCMS, préférentiellement les microcompartiments cellulaires, produits et les transférer, et pour laver les OCMS, préférentiellement les microcompartiments cellulaires avec une solution de rinçage et pour récolter les OCMS, préférentiellement les microcompartiments cellulaires, dans un système fermé à usage unique. Pour se faire une valve de débit 10 est interposée entre les deux premiers ports respectifs des deux dispositifs de filtration 1. Et les étapes décrites ci-dessus peuvent avoir lieu en continue. Le premier port 5 d’un premier dispositif de filtration 1 est relié au premier port 5 d’un deuxième dispositif de filtration 1 afin de pouvoir injecter directement des OCMS, préférentiellement des microcompartiments cellulaires, accumulés par le premier dispositif de filtration 1 et de les rinçer grâce au deuxième dispositif de filtration 1. D’autres formes d’architecture peuvent être mises en forme selon l’utilisation de l’invention. Bien entendu, diverses autres modifications peuvent être apportées à l’invention dans le cadre des revendications annexées. Exemple 1 : Exemple comparatif de l’effet de l’application d’une accélération centrifuge d’au moins 10g sur l’amplification de cellules présentent au sein d’un microcompartiment cellulaire L’objectif de cet exemple est de démontrer l’effet avantageux du procédé de préparation d’un microcompartiment selon l’invention sur l’amplification des cellules comprises au sein d’au moins un microcompartiment. Pour cela, des microcompartiments cellulaires, au sens de l’invention, ont été produits de façon à ce que les microcompartiments présentent les caractéristiques suivantes : - une couche externe en hydrogel entourant une partie interne ; - au moins une cellule dans la partie interne ; et - une plus grande dimension de 600µm. A partir de cet ensemble de microcompartiments, deux groupes de microcompartiment a été formé, à savoir : (a) un groupe de microcompartiment cellulaire subissant une accélération centrifuge de 400g pendant 4 min ; et (b) un groupe contrôle. Au premier jour après application de l’accélération centrifuge, on peut observer à la que les cellules présentes au sein des microcompartiments du groupe (a) sont agglomérés à la périphérie de l’espace intracapsulaire. Par ailleurs, on peut également observer que l’intégrité des microcompartiments cellulaires du groupe (a) est préservée. Au sixième jour, on peut observer à la que les colonies de cellules du groupe (a) est plus importante que celle du groupe (b). Cette observation visuelle est confirmée par la mesure du facteur d’amplification. La mesure du facteur d’amplification est réalisée selon la méthode suivante : Le volume des microcompartiments est mesuré à J0 et à J6 après l'amplification avec la même méthode. Méthode : 1) Mesure du volume des capsules ; 2) Dissociation de la couche externe en hydrogel ; 3) Comptage des cellules selon le protocole de comptage des cellules agrégées Le nombre de cellules présentes au sein du microcompartiment cellulaires à J0 est connu et le nombre de cellules récupérées après 6 jours d'amplification est connu par comptage. Le nombre de cellules viables dans la suspension totale est calculé comme suit : ((Cellules viables dans l'échantillon à J6 x Vol de la suspension totale) / Vol prélevé pour l'analyse) x100 / % de la suspension qui a été dissociée. Ainsi, le facteur d’amplification est calculé par la formule suivante : Nombre de cellules viables dans l'échantillon à J0/Nombre de cellules dans l'échantillon à J6. Les résultats de la mesure du facteur d’amplification sont présentés ci-dessous : - Le facteur d’amplification du groupe (a) après 6 jours de culture est de 14,8 ; - Le facteur d’amplification du groupe (b) après 6 jours de culture est de 11,7. Ainsi, l’application d’une accélération centrifuge sur des microcompartiments cellulaires avant mise en culture permet d’augmenter le facteur d’amplification. Procédé de préparation d’un microcompartiment cellulaire en trois dimensions ne comprenant pas de cellules souches embryonnaires, caractérisé en ce qu’il comprend la mise en œuvre des étapes suivantes : - une étape d’encapsulation d’au moins une cellule dans de l’hydrogel, de façon à former au moins un microcompartiment cellulaire, - une étape de mise en suspension dudit microcompartiment cellulaire dans une solution, préférentiellement une solution de trempage; et - au moins une étape appliquant une accélération centrifuge d’au moins 10 g sur au moins une cellule et/ou au moins un microcompartiment cellulaire. Procédé selon la précédente revendication, caractérisé en ce que l’étape d’encapsulation d’au moins une cellule dans de l’hydrogel est réalisée simultanément à l’étape de mise en suspension du ou des microcompartiments cellulaires dans la solution. Procédé selon l’une des précédentes revendications, caractérisé en ce qu’il comprend au moins une étape appliquant une accélération centrifuge comprise entre 10g et 3000g sur au moins une cellule et/ou au moins un microcompartiment cellulaire. Procédé selon l’une des précédentes revendications, caractérisé en ce qu’il comprend la mise en œuvre des étapes suivantes : a) Encapsulation d’au moins une cellule dans de l’hydrogel, de façon à former au moins un microcompartiment cellulaire ; b) Mise en suspension dudit microcompartiment cellulaire dans une solution, préférentiellement une solution de trempage ; c) Application d’une accélération centrifuge d’au moins 10g sur la suspension de l’étape b) ; d) Rinçage d’au moins un microcompartiment cellulaires obtenus à l’étape c) à l’aide d’une solution de rinçage, préférentiellement de façon à former une suspension comprenant au moins un microcompartiment cellulaire dans une solution de rinçage ; et e) Mise en culture d’au moins un microcompartiment issu de l’étape d). Procédé selon la précédente revendication, caractérisé en ce que les étapes c) et/ou d) sont réalisées à l’aide d’au moins un dispositif comportant un corps (2) comprenant au moins un premier port (5) et un deuxième port (6) et une membrane filtrante (3) s’étendant selon un plan P dans le corps (2) définissant ainsi deux compartiments et apte à empêcher le passages des microcompartiments cellulaire d’un compartiment à l’autre, le premier port (5) étant destiné à l’injection et au soutirage des microcompartiments cellulaire baignés dans une solution de trempage et/ou une solution de rinçage et le deuxième port (6) étant destiné au soutirage et à l’injection de la solution de trempage et/ou de la solution de rinçage, caractérisé en ce que l’injection dans le premier port (5) se fait selon une direction D non sensiblement orthogonale au plan P de la membrane filtrante (3). Procédé selon l’une des précédentes revendications, caractérisé en ce que le microcompartiment obtenu à l’issu de l’étape a) présente une couche externe en hydrogel et une partie interne creuse comprenant au moins une cellule. Procédé selon l’une des revendications 3 à 5, caractérisé en ce que l’étape a) d’encapsulation est réalisée par co-injection de deux ou trois solutions : -une solution d’hydrogel ; -éventuellement une solution intermédiaire isotonique ; -une solution comprenant des cellules, du milieu de culture et éventuellement de la matrice extracellulaire et/ou substitut de matrice extracellulaire, de manière concentrique via un injecteur microfluidique qui permet de former un jet en sortie d’injecteur constitué du mélange des solutions, ledit jet se fractionnant en gouttes, lesdites gouttes étant collectées à l’étape b) dans une solution qui rigidifie la solution d’hydrogel pour former la couche externe de chaque microcompartiment, la partie interne de chaque goutte étant constituée par la solution comprenant les cellules, du milieu de culture et éventuellement de la matrice extracellulaire et/ou substitut de matrice extracellulaire. Procédé selon l’une des revendications 1 à 7, caractérisé en ce que la solution de trempage de l’étape b) comprend au moins un cation choisi parmi calcium, fer, barium, strontium, cuivre, plomb, aluminium, magnésium et leurs combinaisons. Procédé selon l’une des revendications 1 à 8, caractérisé en ce que le microcompartiment obtenu à l’issu de l’étape a) comprend une couche externe en hydrogel et une partie interne comprenant une matrice interne et au moins une cellule. Procédé selon la précédente revendication, caractérisé en ce qu’il comprend une étape x), réalisée après l’étape b), de gélification de la matrice interne présente dans la partie interne d’au moins un microcompartiment cellulaires. Dispositif (1) adapté pour la mise en œuvre des étapes c) et/ou d) selon l’une des revendication 5 à 13, comportant un corps (2) comprenant au moins un premier port (5) et un deuxième port (6) et une membrane filtrante (3) s’étendant selon un plan P dans le corps (2) définissant ainsi deux compartiments et apte à empêcher le passages des microcompartiments cellulaire d’un compartiment à l’autre, le premier port (5) étant destiné à l’injection et au soutirage des microcompartiments cellulaire baignés dans une solution de trempage et/ou une solution de rinçage et le deuxième port (6) étant destiné au soutirage et à l’injection de la solution de trempage et/ou de la solution de rinçage, caractérisé en ce que l’injection dans le premier port (5) se fait selon une direction D non sensiblement orthogonale au plan P de la membrane filtrante (3). Dispositif (1) selon la précédente revendication, dans lequel la direction D est parallèle au plan P. Dispositif (1) selon l’une des revendications 10 ou 11, dans lequel le corps (2) comprend une enveloppe intérieure avec des bords ayant une forme arrondie et la section utile de la membrane filtrante (3) a la forme d’un cercle ou d’une ellipse. Dispositif (1) selon l’une des revendications 10 à 12, dans lequel toute section perpendiculaire au plan P du compartiment destiné à recevoir les microcompartiments cellulaire a une surface strictement inférieure à la surface utile de la membrane filtrante (3). Dispositif (1) selon la revendication précédente dans lequel toute section perpendiculaire au plan P du compartiment destiné à recevoir les microcompartiments cellulaire a une surface deux fois, cinq fois et de préférence dix fois inférieure à la surface utile de la membrane filtrante. Dispositif (1) selon l’une des revendications 10 à 14, dans lequel le corps (2) comporte une forme torique et la section utile de la membrane filtrante (3) a la forme d’un cercle ou d’une ellipse. Dispositif (1) selon l’une des revendications 10 à 15, dans lequel l’injection dans le deuxième port (6) se fait également selon une direction non orthogonale, et préférentiellement parallèle, au plan P de la membrane filtrante (3). Dispositif (1) selon l’une des revendications 10 à 16, dans lequel les deux compartiments présentent des volumes différents. Dispositif (1) selon la précédente revendication, caractérisé en ce que le compartiment destiné à recevoir des microcompartiments cellulaire baignés dans une solution de trempage et/ou une solution de rinçage présente un volume supérieur au compartiment destiné à recevoir la solution de trempage et/ou de la solution de rinçage. Dispositif (1) selon la précédente revendication, caractérisé en ce que le compartiment destiné à recevoir des microcompartiments cellulaire baignés dans une solution de trempage et/ou une solution de rinçage présente un volume au moins 50% plus important que le microcompartiment destiné à recevoir la solution de trempage et/ou de la solution de rinçage.