Brevet FR3117732A1 — publié le 20220624

La présente invention concerne un système (1) de dispersion d’agents de contrôle biologique vivants, comprenant un réservoir d’agents de contrôle biologique (6) vivants en phase liquide, une source d’air (3) sous pression, une buse (2) comprenant une embouchure (13), la conduite d’agents de contrôle biologique (8) présentant une sortie de phase liquide (15) adaptée pour permettre à un jet de phase liquide (12) de sortir de l’embouchure (13) selon une direction principale (20), et la conduite d’air (4) sous pression présentant au moins une sortie d’air (16), l’embouchure comprenant une paroi (19), la sortie de phase liquide (15) étant définie par un orifice (21) sur la paroi de l’embouchure (13), la ou les sorties d’air (16) étant agencées sur la paroi (19) de l’embouchure (13), la forme de la paroi (19) étant configurée pour diriger un écoulement d’air principal (17) sortant de la ou des sorties d’air (16) de manière convergente vers le jet de phase liquide (12). Figure pour l’abrégé : Fig. 1 SYSTEME DE PULVERISATION D’UNE COMPOSITION D’AGENTS DE CONTRÔLE BIOLOGIQUE VIVANTS DOMAINE DE L'INVENTION L’invention concerne un système pour la dispersion d’agents de contrôle biologique vivants, par exemple de la famille des phytoséides du genre Phytoseiulus . ETAT DE LA TECHNIQUE Lors de la dispersion des acariens prédateurs du genre Phytoseiulus , sont traditionnellement utilisées des bouteilles contenant un support solide inerte, tel que de la vermiculite, dans lequel se déplacent les acariens. Les acariens se déplace naturellement vers le haut du conditionnement et cela aboutit à une répartition très hétérogène des acariens lors de leur sortie des bouteilles. Il est également connu de déposer directement le support sur des végétaux objet du contrôle biologique. Cependant, le support peut tomber des végétaux, entraînant une perte des acariens prédateurs sur les végétaux, et ainsi une diminution de l’efficacité de cette méthode de contrôle biologique. Il existe donc un besoin d’une autre méthode de disperser des acariens vivants et mobiles en milieu aqueux sur des végétaux ou supports de cultures dans le cadre d’une stratégie de biocontrôle. Toutefois, les acariens du genre Phytoseiulus sont connus pour être fragiles, strictement aériens et inadaptés au milieu aqueux, par exemple lorsqu’ils se trouvent au niveau du sol, car ils ne fréquentent que la partie aérienne des plantes où se trouvent leurs proies. Un but de l’invention est de proposer un système pour disperser des agents de contrôle biologique vivants de manière homogène dans des cultures. Ce but est atteint dans le cadre de la présente invention grâce à un système de dispersion d’agents de contrôle biologique vivants, comprenant : – un réservoir d’agents de contrôle biologique vivants en phase liquide, - une source d’air sous pression, - une buse, la buse étant reliée au réservoir d’agents de contrôle biologique par une conduite d’agents de contrôle biologique, et à la source d’air sous pression par une conduite d’air sous pression, la buse comprenant une embouchure de pulvérisation, la conduite d’agents de contrôle biologique présentant une sortie de phase liquide adaptée pour permettre à un jet de phase liquide de sortir de l’embouchure selon une direction principale, et la conduite d’air sous pression présentant au moins une sortie d’air, l’embouchure comprenant une paroi, la sortie de phase liquide étant définie par un orifice sur la paroi de l’embouchure, la ou les sorties d’air étant agencées sur la paroi de l’embouchure, la forme de la paroi étant configurée pour diriger un écoulement d’air principal sortant de la ou des sorties d’air de manière convergente vers le jet de phase liquide, l’écoulement d’air principal présentant préférentiellement une symétrie axiale par rapport à la direction principale. L'invention est avantageusement complétée par les caractéristiques suivantes, prises individuellement ou en l’une quelconque de leurs combinaisons techniquement possibles : - la buse comprend au moins deux sorties d’air agencées symétriquement par rapport à la direction principale, la forme de la paroi étant configurée pour diriger un premier écoulement d’air sortant d’une des sorties d’air vers le jet de phase liquide, et pour diriger un deuxième écoulement d’air sortant de l’autre sortie d’air vers le jet de phase liquide, le premier écoulement d’air et le deuxième écoulement d’air étant symétriques par rapport à la direction principale, - le système comprend un réservoir d’enzymes en phase liquide, le réservoir d’enzymes étant relié fluidiquement à la conduite d’agents de contrôle biologique, préférentiellement par un mélangeur adapté pour mélanger des agents de contrôle biologique vivants en phase liquide et une solution d’enzymes, - le système comprend des moyens de mise sous pression du réservoir d’agents de contrôle biologique et/ou du réservoir d’enzymes, adaptés à entraîner un écoulement depuis le réservoir d’agents de contrôle biologique et/ou depuis le réservoir d’enzymes vers la sortie de phase liquide, - l’orifice présente un diamètre supérieur à 1 mm, et préférentiellement supérieur à 1,5 mm, - les moyens de mise sous pression sont mis en œuvre par une conduite de mise sous pression reliant la conduite d’air sous pression et le réservoir d’agents de contrôle biologique, et/ou reliant la conduite d’air sous pression et le réservoir d’enzymes, - le réservoir d’agents de contrôle biologique comprend une composition aqueuse, et des agents de contrôle biologiques sont dispersés dans la composition aqueuse, - la composition aqueuse comprend un gel préparé à partir d’un ou plusieurs épaississants et/ou gélifiants et d’une solution aqueuse, les agents de contrôle biologique vivants étant dispersés de façon homogène dans le gel, lesdits épaississants et/ou gélifiants étant non toxiques pour lesdits agents de contrôle biologique et ledit gel présentant une viscosité dynamique à gradient de vitesse nulle comprise entre 1 et 30 000 mPa.s, - les agents de contrôle biologique vivants sont mobiles, - les agents de contrôle biologique vivants sont choisis dans le groupe constitué d’acariens et/ou d’insectes prédateurs d’acariens, - les agents de contrôle biologique vivants sont des acariens de la famille des phytoséides du genre Phytoseiulus, - les agents de contrôle biologique vivants sont des insectes de type Chrysoperla prédateurs d’insectes ravageurs, notamment de pucerons, Un autre objet de l’invention est une méthode de dispersion d’agents de contrôle biologique vivants, préférentiellement mobiles, la méthode comprenant une étape de pulvérisation d’une composition aqueuse d’agents de contrôle biologique vivants par un système selon un mode de réalisation de l’invention, dans laquelle on entraîne un écoulement d’air principal depuis la source d’air sous pression jusqu’à l’embouchure de pulvérisation, on entraîne un écoulement d’une composition aqueuse comprenant les agents de contrôle biologique vivants en phase liquide jusqu’à l’orifice, une vitesse moyenne de l’écoulement d’air dans la conduite d’air étant adaptée à pulvériser la composition aqueuse par cisaillement de la composition aqueuse par l’écoulement d’air. Avantageusement, le diamètre de l’orifice et la vitesse moyenne de l’écoulement de composition aqueuse sont adaptés pour que le jet de phase liquide ne soit pas pulvérisé en sortie de l’orifice. Avantageusement, la composition aqueuse comprenant les agents de contrôle biologique est pulvérisée seulement par l’écoulement d’air principal après être sortie de l’orifice. Avantageusement, dans une méthode selon un mode de réalisation de l’invention, le système comprend des moyens de mise sous pression du réservoir d’agents de contrôle biologique adaptés à entraîner un écoulement depuis le réservoir d’agents de contrôle biologique et/ou depuis le réservoir d’enzymes vers la sortie de phase liquide, et on contrôle les moyens de mise sous pression de manière à imposer une pression strictement inférieure à 3 bar dans le réservoir d’agents de contrôle biologique, et préférentiellement inférieure à 0,5 bars. DESCRIPTION DES FIGURES D’autres caractéristiques, buts et avantages de l’invention ressortiront de la description qui suit, qui est purement illustrative et non limitative, et qui doit être lue en regard des dessins annexés sur lesquels : La illustre schématiquement un système pour la dispersion d’agents de contrôle biologique vivants selon un mode de réalisation de l’invention. La illustre le taux de survie d’agents de contrôle biologique vivants après avoir été dispersés par un système selon un mode de réalisation de l’invention et par d’autres systèmes. Sur l’ensemble des figures, les éléments similaires portent des références identiques. DEFINITION Dans l’ensemble des modes de réalisation de l’invention décrits, on entend par « bar » une unité de pression exactement égale à 100 000 pascals, dont le zéro correspond à la pression atmosphérique. Le « bar » ainsi défini est également appelé « bar jauge » (noté barg), dont la définition est strictement identique. On n’entend pas par « bar » une unité de pression absolue, noté « para », dont le zéro est représentatif du vide absolu. DESCRIPTION DETAILLEE DE L'INVENTION Architecture générale du système En référence à la , un système 1 de dispersion d’agents de contrôle biologiques vivants comprend un réservoir d’agents de contrôle biologique 6 vivants en phase liquide. Le réservoir d’agents de contrôle biologique 6 peut présenter un volume supérieur à deux litres, préférentiellement supérieur à cinq litres, notamment supérieur à 10 litres. Le réservoir d’agents de contrôle biologique 6 peut préférentiellement comprendre une composition aqueuse 18, la composition aqueuse 18 comprenant des agents de contrôle biologique vivants dispersés. Le système 1 comprend également une source d’air 3 sous pression. La source d’air 3 sous pression peut préférentiellement être mise en œuvre par une turbine de ventilation 5, ce qui permet au système 1 d’être portable tout en permettant à la source d’air 3 sous pression de produire de l’air présentant une pression supérieure à 1 bar, préférentiellement supérieure à 2 bars. Le système 1 comprend une buse 2. La buse 2 est reliée au réservoir d’agents de contrôle biologique 6 par une conduite d’agents de contrôle biologique 8 en phase liquide. La conduite d’agents de contrôle biologique 8 est préférentiellement un tube flexible. La conduite d’agents de contrôle biologique 8 présente une sortie de phase liquide 15. La buse 2 est également reliée à la source d’air 3 sous pression par une conduite d’air 4 sous pression. La conduite d’air 4 sous pression est préférentiellement un tube flexible. La conduite d’air 4 sous pression présente une sortie d’air 16. La buse 2 comprend une embouchure 13 de pulvérisation. La conduite d’agents de contrôle biologique 8 présente une sortie de phase liquide 15 adaptée pour permettre à un jet de phase liquide 12 de sortir de l’embouchure 13 selon une direction principale 20. Par « jet de phase liquide », on entend un écoulement continu de phase liquide entouré par une phase gazeuse, qui n’est pas pulvérisé en gouttelettes. Directement après la sortie de la phase liquide 15 de l’orifice 21, lors de l’utilisation du système, le jet de phase liquide 12 n’est pas encore pulvérisé. La conduite d’air 4 sous pression présente au moins une sortie d’air 16. La source d’air 3 sous pression peut être configurée pour que l’air, au niveau de l’embouchure 13, et préférentiellement au niveau de la ou des sorties d’air 16, présente une vitesse comprise entre 5 m/s et 30 m/s, notamment comprise entre 10 m/s et 25 m/s. L’embouchure 13 comprend une paroi 19. La sortie de phase liquide 15 est définie par un orifice 21 sur la paroi 19 de l’embouchure 13. La ou les sorties d’air 16 sont également agencées sur la paroi 19 de l’embouchure 13. La forme de la paroi 19 est configurée pour diriger un écoulement d’air principal 17 sortant de la ou des sorties d’air 16 de manière convergente vers le jet de phase liquide 12, l’écoulement d’air principal 17 présentant préférentiellement une symétrie axiale par rapport à la direction principale. Ainsi, une composition aqueuse comprenant des agents de contrôle biologique vivants peut être majoritairement pulvérisée, préférentiellement uniquement pulvérisée, par l’écoulement d’air venant à la rencontre du jet de phase liquide comprenant la composition aqueuse, à la sortie de phase liquide 15, un cisaillement étant exercé à l’interface de la composition aqueuse. Ce cisaillement entraîne le fractionnement du jet et donc de la composition aqueuse en très petites gouttelettes. Comme ce cisaillement est mis en œuvre par de l’air à l’interface de la composition, la composition peut être pulvérisée en augmentant significativement le taux de survie des agents de contrôle biologique vivants de la composition aqueuse. Les inventeurs ont découvert que le passage des agents de contrôle biologique vivants par une buse entraînant la pulvérisation par contrainte mécanique d’une partie solide est néfaste à leur survie après dispersion, en raison des risques de blessures des agents, notamment quand la pression imposée sur la composition aqueuse est supérieure à 0,5 bar. La buse 2 selon un mode de réalisation de l’invention permet d’éviter cette cause de mortalité des agents de contrôles biologique vivants. En référence à la , la buse 2 comprend au moins deux sorties d’air 16 agencées symétriquement par rapport à la direction principale 20, la forme de la paroi 19 étant configurée pour diriger un premier écoulement d’air sortant d’une des sorties d’air 16 vers le jet de phase liquide 12, et pour diriger un deuxième écoulement d’air sortant de l’autre sortie d’air 16 vers le jet de phase liquide 12, le premier écoulement d’air et le deuxième écoulement d’air, formant l’écoulement d’air principal 17, étant symétriques par rapport à la direction principale 20. Ainsi, il est possible de pulvériser le jet 12 de phase liquide comprenant la composition aqueuse majoritairement par contact air/liquide, et préférentiellement uniquement par contact air/liquide, selon une direction déterminée par la position dans l’espace de la buse 2. En variante, la sortie d’air 16 peut être définie par une couronne entourant complètement l’orifice 21. En variante, la paroi peut présenter quatre sorties d’air ou un nombre supérieur et paire de sorties d’air 16, par exemple huit sorties d’air 16, agencées de manière symétrique autour de l’orifice 21. Préférentiellement, la forme de la paroi peut être configurée pour que la direction de l’écoulement d’air principal 17 forme un angle avec la direction principale 20 compris entre 30 et 60 degrés, et préférentiellement compris entre 40 et 50 degrés. Ainsi, la pulvérisation de la composition aqueuse peut avoir lieu à la fois par le cisaillement de l’écoulement d’air au contact de l’écoulement de composition aqueuse et par l’entrée de l’écoulement d’air dans l’écoulement de composition aqueuse, et par la convergence des jets d’air vers l’écoulement de composition aqueuse. Le diamètre de l’orifice 21 est configuré pour que, pour un débit prédéterminé de l’écoulement de composition aqueuse, ou pour une vitesse moyenne prédéterminée de l’écoulement de composition aqueuse 18 dans la conduite d’agents de contrôle biologique 8, la sortie du jet de phase liquide, comprenant la composition aqueuse 18, en dehors de l’embouchure 13 n’entraîne pas de pulvérisation de la composition aqueuse. Ainsi, les agents de contrôle biologique vivants peuvent sortir de la buse 2 sans subir une contrainte mécanique assez forte pour les blesser lors du passage par l’orifice 21. En effet, la pulvérisation est entraînée physiquement à la fois par un diamètre de l’orifice suffisamment petit et par une vitesse de l’écoulement suffisamment élevée. Ainsi, l’homme du métier, pour une vitesse d’écoulement prédéterminée, saura adapter le diamètre de l’orifice de telle manière, c’est-à-dire assez élevé, pour que le jet de phase liquide ne soit pas majoritairement pulvérisé par l’orifice 21. De plus, le diamètre de l’orifice 21 est choisi en fonction de la taille des agents de contrôle biologique vivant. Préférentiellement, le diamètre de l’orifice 21 est choisi supérieure à deux fois, notamment supérieur à trois fois la taille de l’agent de contrôle biologique vivant. Ainsi, l’agent de contrôle biologique vivant subit un cisaillement limité, ce qui permet d’augmenter la survie des agents de contrôle biologique vivant en sortie du système 1 lors de la dispersion des agents de contrôle biologique vivants. Pour les vitesses d’écoulement préférentielles des modes de réalisation de l’invention, l’orifice 21 présente un diamètre supérieur à 1 mm, et préférentiellement à 1,5 mm. Ainsi, la composition aqueuse n’est pas majoritairement pulvérisée en passant par l’orifice 21, mais principalement lors du cisaillement avec l’écoulement d’air 17. Le réservoir d’agents de contrôle biologique 6 peut être mis sous pression, préférentiellement par la source d’air 3 sous pression par l’intermédiaire d’une conduite de mise sous pression 10, de manière à entraîner un écoulement de composition aqueuse 18 à l’orifice 21 compris entre 2 mL/s et 4,5 mL/s. Composition d’agents de contrôle biologique La composition aqueuse pulvérisable comprend des agents de contrôle biologique vivants dispersés de façon homogène dans un gel préparé à partir d’un ou plusieurs épaississants et/ou gélifiants et d’une solution aqueuse. Les épaississants et/ou gélifiants sont non toxiques pour lesdits agents de contrôle biologique et ledit gel présente une viscosité dynamique à gradient de vitesse nulle comprise entre 1 et 30 000 mPa.s. De préférence, ledit gel présente une viscosité dynamique à gradient de vitesse nulle comprise entre 10 et 25 000 mPa.s, de manière encore préférentielle comprise entre 2 et 5 000 mPa.s, de manière encore préférentielle comprise entre 60 et 4 500 mPa.s, de manière encore préférentielle comprise entre 80 et 150 mPa.s. De préférence, les agents de contrôle biologique vivants sont choisis parmi des agents de contrôle biologique vivants mobiles. Par « mobile », on entend que l’agent de contrôle biologique vivant existe sous une forme qui lui permet, au moment de l’utilisation du système, d’être mobile dans l’espace, et particulièrement dans une culture. En effet, les inventeurs ont découvert que les agents de contrôle biologique vivants mobiles sont particulièrement affectés par une pulvérisation par cisaillement par un matériau solide. Ainsi, une pulvérisation entraînée majoritairement par un cisaillement entre l’air et la composition aqueuse permet de pulvériser des agents de contrôle biologique vivants mobiles avec un taux de survie élevée. De préférence, les agents de contrôle biologique vivants peuvent être choisis dans le groupe constitué d’acariens et/ou d’insectes prédateurs de ravageurs de culture, préférentiellement d’acariens. De préférence, les agents de contrôle biologique vivants sont des insectes de type Chrysoperla prédateurs de ravageurs de culture, notamment de pucerons . Les agents de contrôle biologique vivants peuvent être sous la forme d’œufs. Selon un mode de réalisation, lesdits agents de contrôle biologique vivants sont des acariens de la famille des Phytoseiidae ou des acariens prédateurs du sol, de préférence Hypoaspis miles ; Macrocheles robustulus ; Gaeolaelaps aculeifer. De préférence, lesdits agents de contrôle biologique de la famille des Phytoseiidae sont choisis dans le groupe constitué des genres Phytoseiulus, de préférence Phytoseiulus persimilis , Phytoseiulus macropilis , Phytoseiulus longipes ou Phytoseiulus fragariae, et genre Amblyseius, de préférence Amblyseius swirskii, Amblyseius californicus, Amblyseius cucumeris, Amblyseius andersoni et Amblyseius montdorensis. Selon un mode de réalisation, lesdits agents de contrôle biologique vivants sont des insectes diptères, de préférence de la famille des Cecidomyiidae ou hyménoptères, de préférence des familles des Brachonidae, Aphelinidae ou Trichogrammatidae. De préférence, lesdits agents de contrôle biologique de la famille des Cecidomyiidae sont choisis dans le groupe constitué de Feltiella acarisuga et Aphidoletes aphidimyza. De préférence, lesdits agents de contrôle biologique de la famille des Brachonidae sont choisis dans le groupe constitué de Aphidius colemani ; Aphidius ervi , Aphidius matricariae. De préférence, lesdits agents de contrôle biologique de la famille des Aphelinidae sont choisis dans le groupe constitué de Aphelinus abdominalis, Encarsia formosa; Eretmocerus eremicus ; Eretmocerus mundus. Selon un mode de réalisation, lesdits agents de contrôle biologique vivants sont des nématodes de la famille des Steinernematidae ou de la famille des Heterorhabditidae ou de la famille des Rhabditidae. De préférence, lesdits agents de contrôle biologique de la famille des Steinernematidae sont choisis dans le groupe constitué de Steinernema carpocapsae ; Steinernema kraussei, Steinernema feltiae. De préférence, lesdits agents de contrôle biologique de la famille des Heterorhabditidae sont choisis dans le groupe constitué de Heterorhabditis bacteriophora. De préférence, lesdits agents de contrôle biologique de la famille des Rhabditidae sont choisis dans le groupe constitué de Phasmarhabditis bacteriophora. De préférence, lesdits agents de contrôle biologique sont présents dans la composition aqueuse sous forme de larves, nymphes, pupes et/ou adultes. De préférence, lesdits agents de contrôle biologique sont présents dans la composition sous forme de tout stade de développement à l’exception des œufs. De préférence, le système 1 permet de maintenir au moins 60 %, de préférence au moins 70 %, de manière encore préférée au moins 80 %, de manière particulièrement préférée au moins 90 % des agents de contrôle biologique de la famille des phytoséides du genre Phytoseiulus vivants pendant au moins 2h, de préférence 6h, de manière encore préférée 12h. De préférence, le système 1 permet de maintenir au moins 60 %, de préférence au moins 70 %, de manière encore préférée au moins 80 %, de manière particulièrement préférée au moins 90 % de la longévité témoin des agents de contrôle biologique de la famille des phytoséides du genre Phytoseiulus pendant au moins 2h, de préférence 6h, de manière encore préférée 12h. La « longévité témoin » est définie comme une mortalité inférieure à 20% à 5 jours. De préférence, le système 1 permet de maintenir au moins 60 %, de préférence au moins 70 %, de manière encore préférée au moins 80 %, de manière particulièrement préférée au moins 90 % de la fécondité témoin des agents de contrôle biologique de la famille des phytoséides du genre Phytoseiulus pendant au moins 2h, de préférence 6h, de manière encore préférée 12h. La « fécondité témoin » est définie comme une fécondité supérieure ou égale à 10 œufs/femelle/5 jours, notamment pour les agents de contrôle biologique de la famille des phytoséides du genre Phytoseiulus. La composition permet, après sa dispersion ou pulvérisation en gouttes, un taux de sortie du gel des agents de contrôle biologique de la famille des phytoséides du genre Phytoseiulus vivants supérieur à 60 %, notamment supérieur à 80%. Les épaississants/gélifiants Les épaississants/gélifiants appropriés et leur concentration pour préparer la composition aqueuse pulvérisable sont sélectionnés pour satisfaire au critère de viscosité décrit ci-dessus, pour permettre une dispersion de façon homogène dans la composition des agents de contrôle biologique, notamment de la famille des phytoséides du genre Phytoseiulus, et pour être non-toxiques pour les agents de contrôle biologique vivants. « Non-toxique » signifie moins de 20 % d’agents de contrôle biologique morts au bout de 2h. En outre, les épaississants/gélifiants appropriés pour préparer la composition sont sélectionnés pour n’être ni toxiques pour les plantes de culture visées, ni pour le consommateur desdites plantes ou sous-produits desdites plantes. De préférence, les épaississants/gélifiants appropriés pour préparer la composition sont des épaississants/gélifiants alimentaires. De manière plus préférée, les épaississants/gélifiants appropriés pour préparer la composition sont choisis dans le groupe constitué des : polyosides et osides. On peut citer dans cette famille à titre d’exemples : alginate, amidon de maïs modifié, amylopectine, carraghénanes, chitosan, dextrine, gomme de guar, gomme de xanthane, glycérol, gomme de konjac. sels de polyacrylate. On peut citer dans cette famille à titre d’exemples : Carbomer 940 (acide polyacrylique), Gel maker emu (polyacrylate de sodium). dérivés de la povidone. On peut citer dans cette famille à titre d’exemples : PVP (Polyvinylpyrrolidone). dérivés de la cellulose. On peut citer dans cette famille à titre d’exemples : Carboxyméthylcellulose, hydroxypropylcellulose. sels métalliques. On peut citer dans cette famille à titre d’exemples : Chlorure de calcium, chlorure de potassium, sulfate d’aluminium. De préférence, lesdits épaississants/gélifiants sont utilisés dans la composition à une concentration comprise entre 0,5 et 200 g/L, de préférence entre 1 et 90 g/L, de préférence encore entre 2 et 40 g/L. De manière plus préférée, les épaississants/gélifiants appropriés pour préparer la composition sont choisis dans le groupe constitué des polyosides et des osides. De manière particulièrement préférée, lesdits polyosides et osides sont choisis dans le groupe constitué de l’amidon de maïs modifié, des carraghénanes, de la gomme xanthane et de la gomme de konjac. De préférence, l’amidon de maïs modifié est utilisé à une concentration comprise entre 30 et 90 g/L, de préférence à 34 g/L. De préférence, un gel d’amidon de maïs modifié est utilisé à une viscosité dynamique à gradient de vitesse nulle comprise entre 60 et 25 100 mPa.s, de préférence à 80 mPa.s. De préférence, les carraghénanes sont utilisées à une concentration comprise entre 1 et 10 g/L, de préférence à 3 g/L. De préférence, un gel de carraghénanes est utilisé à une viscosité dynamique à gradient de vitesse nulle comprise entre 1 et 4 900 mPa.s, de préférence à 2 mPa.s. De préférence, la gomme xanthane est utilisée à une concentration comprise entre 0,5 et 5 g/L, de préférence à 2 g/L. De préférence, un gel de gomme xanthane est utilisé à une viscosité dynamique à gradient de vitesse nulle comprise entre 7 et 1680 mPa.s, de préférence à 135 mPa.s. De préférence, la gomme de konjac est utilisée à une concentration comprise entre 0,5 et 10 g/L, de préférence à 4 g/L. De préférence, un gel de gomme de konjac est utilisé à une viscosité dynamique à gradient de vitesse nulle comprise entre 1 et 450 mPa.s, de préférence à 27 mPa.s. Les enzymes La composition aqueuse peut en outre comprendre une enzyme capable de dégrader le gel préparé à partir d’un ou plusieurs épaississants et/ou gélifiants et d’une solution aqueuse à une concentration de l’enzyme dans la solution aqueuse permettant une dégradation totale dudit gel en moins de 10 minutes, de préférence en moins de 5 minutes, de manière encore préférée en moins de 2 minutes. L’ajout de l’enzyme à la composition permet d’améliorer le taux de sortie du gel des agents de contrôle biologique vivants, notamment de la famille des phytoséides du genre Phytoseiulus vivants après dispersion ou pulvérisation de la composition. De préférence, le taux de sortie d’une composition selon l’invention avec enzyme est supérieur à 80 %. De préférence, l’enzyme est ajoutée en dernier à la composition selon l’invention, notamment après le gélifiant ou l’épaississant et après les agents de contrôle biologique vivants. De préférence, l’enzyme est ajoutée à la composition aqueuse moins de 2 heures avant sa dispersion/pulvérisation, de préférence juste avant sa dispersion/pulvérisation. Le système 1 comprend préférentiellement un réservoir d’enzymes 7 en phase liquide. Le réservoir d’enzymes 7 est relié fluidiquement à la conduite d’agents de contrôle biologique 8. Ainsi, lors de la dispersion des agents de contrôle biologique vivants, il est possible d’ajouter l’enzyme immédiatement avant la pulvérisation de la composition aqueuse, et ainsi d’éviter de dégrader les propriétés rhéologiques de la solution aqueuse avant la pulvérisation. De préférence, le réservoir d’enzymes 7 est relié à la conduite d’agents de contrôle biologique 8 par un mélangeur de fluides, adapté à mélanger des agents de contrôle biologique vivants en phase liquide et une solution d’enzymes. Le mélangeur peut être choisi parmi une trompe à eau qui permet une aspiration d’un liquide par le passage d’un autre liquide en mélangeant les deux liquides, et un système de jonction fluide. En variante, le mélangeur peut être agencé entre la buse 2 et la connexion fluidique reliant la conduite d’agents de contrôle biologique 8 et une conduite reliant au réservoir d’enzymes 7. L’enzyme est bien entendu appropriée pour dégrader ledit épaississant/gélifiant de la composition. Les conditions les plus favorables sont obtenues lorsque l’enzyme dégrade rapidement le gel puisque plus le gel est rapidement dégradé, plus les agents de contrôle biologique sont rapidement libérés. L’homme du métier saura choisir la concentration de l’enzyme en fonction de son activité enzymatique, de la température optimale, des concentrations en épaississant et de la durée d’hydrolyse souhaitée. De préférence, la concentration de l’enzyme est choisie pour dégrader 100 % du gel en moins de 12h, de préférence en moins de 6h, de manière encore préférée en moins de 2h, de manière particulièrement préférée en moins de 1 min. Par exemple, on utilisera des enzymes : Hydrolysant les liaisons osidiques pour la famille des osides/polyosides. Dans le cas de l’alginate, l’alginate lyase dégrade l’alginate par β-élimination des liaisons osidique. Dans le cas de l’amidon modifié de maïs, l’alpha-amylase hydrolyse les liaisons osidiques alpha (1,4). Par exemple, on utilise une alpha-amylase à une activité enzymatique de 800 FAU/g à 20°C, 1 FAU hydrolysant 17 mg d’amidon par minute. Pour dégrader 100 mL d’amidon de maïs modifié à 34 g/L en 1 minute, il faut 200 FAU soit 0.25g d’alpha-amylase. Pour une dégradation en deux heures, il faut 1.6 FAU soit 0.002 g d’alpha-amylase. Enfin, pour une dégradation en 12h, il faut 0.27 FAU soit 0.3mg d’alpha-amylase. Dans le cas de l’amylopectine, l’alpha-amylase hydrolyse les liaisons osidiques alpha (1,4). Dans le cas des dextrines, la glycose hydrolase limite dextrinase hydrolyse les liaisons osidiques alpha (1,6). Dans le cas des carraghénanes, la k-carraghénase hydrolyse les liaisons osidiques alpha (1,4). Dans le cas des gommes de Guar et de Xanthane, la bêta-mannanase hydrolyse de manière aléatoire les liaisons (1,4)-β-D-mannosidique. Pour la Gomme de Xathane, la xanthane lyase hydrolyse les liaisons beta-D-mannosyle-beta-D-1,4-glucuronosyle. Dans le cas du chitosan, la chitosanase hydrolyse les liaisons osidiques beta (1,4) entre les résidus de D-glucosamine. Dans le cas du konjac, l’endo-1,4 beta-mannanase hydrolyse les liaisons osidiques beta (1,4) des résidus glucomannane. Pour les dérivés de la cellulose : L’Endo-cellulase : brise la structure cristalline de la cellulose en chaînes polysaccharidiques. L’Exo-cellulase : coupe 2-4 unités aux terminaisons des chaînes polysaccharides. La β-glucosidase : hydrolyse les chaînes polysaccharidiques en monosaccharides. L’Oxidative cellulase : dépolymérise la cellulose La cellulose phosphorylase : dépolymérise la cellulose en utilisant des phosphates. Ecoulements fluides dans le système 1 Le système 1 peut comprendre des moyens de mise sous pression du réservoir d’agents de contrôle biologique 6 et/ou du réservoir d’enzymes 7. Les moyens de mise sous pression sont adaptés à entraîner un écoulement depuis le réservoir d’agents de contrôle biologique 6 et/ou depuis le réservoir d’enzymes 7 vers la sortie de phase liquide 15. Ainsi, il est possible de mettre en œuvre des écoulements comprenant les agents de contrôle biologique vivants sans risquer de diminuer leur taux de survie. En effet, certaines pompes peuvent engendrer des blessures par pression mécanique et dégrader la survie des agents de contrôle biologique vivants. De préférence, les moyens de mise sous pression sont mis en œuvre par une conduite de mise sous pression 10 reliant la conduite d’air 4 sous pression et le réservoir d’agents de contrôle biologique 6, et/ou reliant la conduite d’air 4 sous pression et le réservoir d’enzymes 7. La conduite de mise sous pression 10 peut être dimensionnée de manière à mettre sous pression le réservoir d’agents de contrôle biologique 6 et/ou le réservoir d’enzymes 7 à une pression prédéterminée, en fonction de la pression de la source d’air 3. Ainsi, il est possible de déclencher simultanément l’écoulement d’air 17, l’écoulement de composition aqueuse et préférentiellement un écoulement d’enzymes en contrôlant uniquement la source d’air 3 sous pression. Il est également possible d’utiliser des pompes de type péristaltique pour entrainer les solutions depuis le réservoir d’agents de contrôle biologique 6 et/ou depuis le réservoir d’enzymes 7 vers la sortie de phase liquide. Le procédé de préparation de la composition Le procédé de préparation de la composition selon l’invention comprend les étapes suivantes : dissolution du ou des épaississants et/ou gélifiants dans une base aqueuse, de préférence dans l’eau, de préférence dans l’eau, jusqu’à formation d’un gel, ajout des agents de contrôle biologique, notamment de la famille des phytoséides du genre Phytoseiulus, et leur dispersion de façon homogène dans le gel, de préférence par un brassage léger de la solution, éventuellement ajout d’une enzyme capable de dégrader le gel à une concentration permettant une dégradation totale dudit gel en moins de 12 heures, de préférence en moins de 2h. Ce procédé de préparation est réalisé de préférence entre 18°C et 25°C, de manière particulièrement préférée à 20°C. Ce procédé de préparation est réalisé de préférence à une humidité relative supérieure à 30 %, de préférence 60 %. La méthode de dispersion de la composition aqueuse Un aspect de l’invention est une méthode de dispersion d’agents de contrôle biologique vivants. La méthode comprend une étape de pulvérisation de la composition aqueuse d’agents de contrôle biologique vivants par un système selon un mode de réalisation de l’invention. La méthode comprend une étape dans laquelle on entraîne un écoulement d’air 17 depuis la source d’air 4 sous pression jusqu’à l’embouchure de pulvérisation 13. La méthode comprend également une étape dans laquelle on entraîne un écoulement d’une composition aqueuse comprenant les agents de contrôle biologique vivants en phase liquide jusqu’à l’embouchure de pulvérisation 13. La méthode est mise en œuvre de sorte qu’une vitesse moyenne de l’écoulement d’air 17 dans la conduite d’air 4 est adaptée à pulvériser la composition aqueuse par cisaillement de la composition aqueuse par l’écoulement d’air. De préférence, le rapport entre la vitesse moyenne de l’écoulement d’air dans la conduite d’air 4 et entre la vitesse moyenne de l’écoulement de composition aqueuse est supérieur à un rapport prédéterminé, au-dessus duquel la composition aqueuse peut-être pulvérisée par cisaillement par l’écoulement d’air 17. De préférence, la vitesse moyenne de l’écoulement d’air au niveau de l’embouchure 13, et préférentiellement au niveau de la ou des sorties d’air 16, présente une vitesse comprise entre 5 m/s et 30 m/s, notamment comprise entre 10 m/s et 25 m/s. De préférence, la vitesse moyenne de l’écoulement de composition aqueuse est comprise entre 1 m/s et 5 m/s, notamment comprise entre 1,5 m/s et 3 m/s. Ainsi, il est possible de pulvériser la composition aqueuse sans la cisailler par un matériau solide, ce qui permet de diminuer la contrainte mécanique exercée sur les agents de contrôle biologique à débit de composition aqueuse constant, et ainsi d’augmenter le taux de survie des agents de contrôle biologique vivants. En effet, la pulvérisation de la composition aqueuse par de l’air permet d’augmenter le taux de survie des agents de contrôle biologique vivants. De préférence, la composition aqueuse est pulvérisée seulement par l’écoulement d’air principal 17 après être sortie de l’orifice 21. Ainsi, le taux de survie des agents de contrôle biologique vivant peut être augmenté par rapport au taux de survie des agents de contrôle biologique pulvérisés au moins en partie par un contact entre la composition aqueuse et l’orifice. De préférence, les moyens de mise sous pression sont contrôlés de manière à imposer une pression strictement inférieure à 3 bar et préférentiellement strictement inférieure à 1 bar dans le réservoir d’agents de contrôle biologique 6, notamment inférieure à 0,5 bars, et préférentiellement inférieure à 0,3 bars. En effet, il a été constaté que le stockage des agents de contrôle biologique à une pression trop élevée, notamment supérieure à 3 bar, et notamment supérieure à 0,5 bars, augmente la mortalité des agents de contrôle biologique. En référence à la , le taux de survie des agents de contrôle biologique vivant a été mesuré après pulvérisation de la composition aqueuse pour différents systèmes. La mesure (a), la mesure (b), la mesure (c) et la mesure (d) correspondent à des pulvérisations de la composition aqueuse par des buses entraînant la pulvérisation d’une composition par passage au travers d’un petit orifice avant la sortie de la composition à l’extérieur du système. La mesure (e) correspond à la pulvérisation de la composition aqueuse par une buse selon un mode de réalisation de l’invention. On observe que le taux de survie des agents de contrôle biologique vivants est significativement supérieur lors de la mesure (e), c’est-à-dire en utilisant un système selon un mode de réalisation de l’invention. En particulier, le taux de survie des agents de contrôle biologique vivants dispersés par un système 1 selon un mode de réalisation de l’invention est supérieur à 80 %. Système (1) de dispersion d’agents de contrôle biologique vivants, caractérisé en ce qu’il comprend : – un réservoir d’agents de contrôle biologique (6) vivants en phase liquide, - une source d’air (3) sous pression, - une buse (2), la buse (2) étant reliée au réservoir d’agents de contrôle biologique (6) par une conduite d’agents de contrôle biologique (8), et à la source d’air (3) sous pression par une conduite d’air (4) sous pression, la buse (2) comprenant une embouchure (13) de pulvérisation, la conduite d’agents de contrôle biologique (8) présentant une sortie de phase liquide (15) adaptée pour permettre à un jet de phase liquide (12) de sortir de l’embouchure (13) selon une direction principale (20), et la conduite d’air (4) sous pression présentant au moins une sortie d’air (16), l’embouchure comprenant une paroi (19), la sortie de phase liquide (15) étant définie par un orifice (21) sur la paroi (19) de l’embouchure (13), la ou les sorties d’air (16) étant agencées sur la paroi (19) de l’embouchure (13), la forme de la paroi (19) étant configurée pour diriger un écoulement d’air principal (17) sortant de la ou des sorties d’air (16) de manière convergente vers le jet de phase liquide (12), l’écoulement d’air principal (17) présentant préférentiellement une symétrie axiale par rapport à la direction principale (20). Système (1) selon la revendication 1, dans lequel la buse comprend au moins deux sorties d’air (16) agencées symétriquement par rapport à la direction principale (20), la forme de la paroi (19) étant configurée pour diriger un premier écoulement d’air sortant d’une des sorties d’air (16) vers le jet de phase liquide (12), et pour diriger un deuxième écoulement d’air sortant de l’autre sortie d’air (16) vers le jet de phase liquide (12), le premier écoulement d’air et le deuxième écoulement d’air étant symétriques par rapport à la direction principale (20). Système (1) selon l’une des revendications précédentes, comprenant un réservoir d’enzymes (7) en phase liquide, le réservoir d’enzymes (7) étant relié fluidiquement à la conduite d’agents de contrôle biologique (8), préférentiellement par un mélangeur (9) adapté pour mélanger des agents de contrôle biologique vivants en phase liquide et une solution d’enzymes. Système (1) selon l’une des revendications précédentes, comprenant des moyens de mise sous pression du réservoir d’agents de contrôle biologique (6) et/ou du réservoir d’enzymes (7), adaptés à entraîner un écoulement depuis le réservoir d’agents de contrôle biologique (6) et/ou depuis le réservoir d’enzymes (7) vers la sortie de phase liquide (15). Système (1) selon l’une des revendications précédentes, dans lequel l’orifice (21) présente un diamètre supérieur à 1 mm, et préférentiellement supérieur à 1,5 mm. Système (1) selon l’une des revendications 4 ou 5 dans sa dépendance à la revendication 4, dans lequel les moyens de mise sous pression sont mis en œuvre par une conduite de mise sous pression (10) reliant la conduite d’air (4) sous pression et le réservoir d’agents de contrôle biologique (6), et/ou reliant la conduite d’air (4) sous pression et le réservoir d’enzymes (7). Système (1) selon l’une des revendications précédentes, dans lequel le réservoir d’agents de contrôle biologique (6) comprend une composition aqueuse, et des agents de contrôle biologiques dispersés dans la composition aqueuse. Système (1) selon la revendication 7, dans lequel la composition aqueuse comprend un gel préparé à partir d’un ou plusieurs épaississants et/ou gélifiants et d’une solution aqueuse, les agents de contrôle biologique vivants étant dispersés de façon homogène dans le gel, lesdits épaississants et/ou gélifiants étant non toxiques pour lesdits agents de contrôle biologique et ledit gel présentant une viscosité dynamique à gradient de vitesse nulle comprise entre 1 et 30 000 mPa.s. Système (1) selon l’une des revendications précédentes, dans lequel les agents de contrôle biologique vivants sont mobiles. Système (1) selon l’une des revendications précédentes, dans lequel les agents de contrôle biologique vivants sont choisis dans le groupe constitué d’acariens et/ou d’insectes prédateurs. Système (1) selon la revendication précédente, dans lequel les agents de contrôle biologique vivants sont des acariens de la famille des phytoséides du genre Phytoseiulus. Système selon la revendication 8, dans lequel les agents de contrôle biologique vivants sont des insectes de type Chrysoperla prédateurs d’insectes ravageurs. Méthode de dispersion d’agents de contrôle biologique vivants, comprenant une étape de pulvérisation d’une composition aqueuse d’agents de contrôle biologique vivants par un système (1) selon l’une des revendications 1 à 12, dans laquelle on entraîne un écoulement d’air principal (17) depuis la source d’air (4) sous pression jusqu’à l’embouchure de pulvérisation (13), on entraîne un écoulement d’une composition aqueuse comprenant les agents de contrôle biologique vivants en phase liquide jusqu’à l’orifice (21), une vitesse moyenne de l’écoulement d’air (17) dans la conduite d’air (4) étant adaptée à pulvériser la composition aqueuse par cisaillement de la composition aqueuse par l’écoulement d’air. Méthode de dispersion d’agents de contrôle biologique vivants selon la revendication précédente, dans laquelle la composition aqueuse comprenant les agents de contrôle biologique (18) est pulvérisée seulement par l’écoulement d’air principal après être sortie de l’orifice (21). Méthode de dispersion d’agents de contrôle biologique vivants selon la revendication 13 ou 14, dans laquelle le système (1) comprend des moyens de mise sous pression du réservoir d’agents de contrôle biologique (6) adaptés à entraîner un écoulement depuis le réservoir d’agents de contrôle biologique (6) et/ou depuis le réservoir d’enzymes (7) vers la sortie de phase liquide (15), dans laquelle on contrôle les moyens de mise sous pression de manière à imposer une pression strictement inférieure à 3 bar dans le réservoir d’agents de contrôle biologique (6), et préférentiellement inférieure à 0,5 bars.