Brevet FR3118711A1 — publié le 20220715

METHODE COSMETIQUE ET COMPOSITION A BASE DE FRUCTO-OLIGOSACCHARIDES A CHAINE COURTE La présente invention concerne une méthode cosmétique pour équilibrer le microbiote cutané, comprenant l’application d’au moins un fructo-oligosaccharide à chaîne courte. La présente invention concerne également une composition cosmétique comprenant, dans un support cosmétiquement acceptable, au moins un fructo-oligosaccharide à chaîne courte. METHODE COSMETIQUE ET COMPOSITION A BASE DE FRUCTO-OLIGOSACCHARIDES A CHAINE COURTE DOMAINE DE L’INVENTION La présente invention se situe dans le domaine de la cosmétique. Plus précisément, elle se situe dans le domaine du maintien de l’équilibre du microbiote cutané. ÉTAT DE LA TECHNIQUE La peau est un écosystème complexe et dynamique représentant le plus grand organe du corps humain. Outre la barrière physique, le microbiote cutané garantit une protection et une barrière biologique en rivalisant avec les agents pathogènes et en communiquant étroitement avec les cellules et les composants du système immunitaire. Ainsi, le microbiote cutané peut être considéré comme un acteur essentiel pour le maintien d'une peau saine (1). Le microbiote cutané comprend des microorganismes résidents qui se trouvent couramment dans la peau, considérés comme commensaux, ce qui signifie qu'ils sont généralement inoffensifs et offrent très probablement certains avantages à l'hôte (2, 3). Parmi les espèces résidentes du microbiote cutané, il y a des bactéries propioniques comme Propionibacterium acnes , également appelée Cutibacterium acnes , des staphylocoques à coagulase négative comme Staphylococcus epidermidis et d'autres types comme Corynebacteria , Micrococci et Acinebacter . S. epidermidis est une bactérie commensale, faisant partie du microbiote cutané que l’on peut qualifier de « normal », qui sert à protéger la peau humaine des infections et autres agressions environnementales (4). C. acnes a été liée à l'état cutané de l'acné et associée à de nombreuses pathologies cutanées (5, 6). Le microbiote cutané comprend également des microorganismes transitoires, dont les espèces les plus courantes sont Staphylococcus aureus , Escherichia coli et Pseudomonas aeruginosa (4, 7). S. aureus a été identifiée comme un pathogène important lors de la sur-colonisation de la peau et est impliquée dans le développement de maladies de la peau humaine (2). La composition et l'abondance du microbiote cutané varient considérablement selon les parties du corps, entre les individus et au cours du temps, ce qui se traduit par une communauté bactérienne extrêmement dynamique et très fluctuante (8, 9). Le microbiote cutané humain est récemment devenu un centre d'intérêt pour les domaines dermatologique et cosmétique. Comprendre le microbiote cutané et comment maintenir son équilibre délicat sont des étapes essentielles pour appréhender les mécanismes responsables d'une peau saine et de son apparence. Les déséquilibres dans la composition du microbiote cutané, également appelés dysbiose, sont associés à plusieurs pathologies cutanées comme l'acné, l'eczéma ou les allergies, ainsi qu'à des conditions non pathologiques telles que la peau sensible, l’irritation ou la peau sèche. Par conséquent, le développement d'approches préservant ou rétablissant l'équilibre du microbiote représente une nouvelle cible pour favoriser la santé de la peau. Il existe donc des besoins pour une méthode simple et efficace permettant d’équilibrer le microbiote de la peau. Dans ce cadre, la Demanderesse a démontré que l’utilisation cosmétique d’une composition cosmétique comprenant au moins un fructo-oligosaccharide à chaîne courte permet d’équilibrer le microbiote cutané de façon sélective, en stimulant les organismes bénéfiques et en limitant les organismes non bénéfiques. Cette utilisation cosmétique permet d’améliorer l’apparence et/ou le confort de la peau, des phanères et/ou des muqueuses. RÉSUMÉ Ainsi, la présente invention concerne une méthode cosmétique pour équilibrer le microbiote cutané, comprenant une étape d’application sur tout ou partie de la peau, des phanères et/ou des muqueuses d’une composition cosmétique comprenant, dans un support cosmétiquement acceptable, au moins un fructo-oligosaccharide à chaîne courte. Dans un mode de réalisation, la méthode cosmétique selon l’invention est pour améliorer l’apparence et/ou le confort cutané. Dans un mode de réalisation de l’invention, améliorer l’apparence et/ou le confort cutané comprend réduire au moins un désagrément cutané choisi dans le groupe constitué par les rougeurs, les tiraillements, la peau terne et les démangeaisons. Dans un mode de réalisation, le au moins un fructo-oligosaccharide est issu de la betterave sucrière. Dans un mode de réalisation, le au moins un fructo-oligosaccharide à chaîne courte est un mélange : - d’un fructo-oligosaccharide contenant une unité de glucose et deux unités de fructose, aussi appelé 1-kestose ou GF2, présentant un degré de polymérisation égal à 3; - d’un fructo-oligosaccharide contenant une unité de glucose et trois unités de fructose, aussi appelé nystose ou GF3, présentant un degré de polymérisation égal à 4 ; et - d’un fructo-oligosaccharide contenant une unité de glucose et quatre unités de fructose, aussi appelé 1-bêta-fructofuranosylnystose ou GF4, présentant un degré de polymérisation égal à 5. Dans un mode de réalisation de l’invention, équilibrer le microbiote cutané comprend favoriser le développement et/ou la croissance de Staphylococcus epidermidis , et/ou limiter le développement et/ou la croissance d’au moins un organisme parmi Cutibacterium acnes et Staphylococcus aureus . Dans un mode de réalisation, la méthode cosmétique selon l’invention est mise en œuvre après un événement dysbiotique. La présente invention concerne également l’utilisation d’une composition cosmétique comprenant, dans un support cosmétiquement acceptable, au moins un fructo-oligosaccharide à chaîne courte, pour équilibrer le microbiote cutané. La présente invention concerne également une composition cosmétique comprenant, dans un support cosmétiquement acceptable, au moins un fructo-oligosaccharide à chaîne courte, dans laquelle le au moins un fructo-oligosaccharide à chaîne courte est un mélange : - d’un fructo-oligosaccharide contenant une unité de glucose et deux unités de fructose, aussi appelé 1-kestose ou GF2, présentant un degré de polymérisation égal à 3; - d’un fructo-oligosaccharide contenant une unité de glucose et trois unités de fructose, aussi appelé nystose ou GF3, présentant un degré de polymérisation égal à 4 ; et - d’un fructo-oligosaccharide contenant une unité de glucose et quatre unités de fructose, aussi appelé 1-bêta-fructofuranosylnystose ou GF4, présentant un degré de polymérisation égal à 5. Dans un mode de réalisation, la composition cosmétique est sous la forme d’un produit dermo-cosmétique, d’un produit capillaire, d’un produit d’hygiène intime, d’un pansement et/ou d’un produit cicatrisant. DÉFINITIONS Dans la présente invention, les termes ci-dessous sont définis de la manière suivante : Par « améliorer l’apparence et/ou le confort de la peau , des phanères et/ou des muqueuses », on désigne diminuer, voire supprimer, le nombre, l’étendue, l’occurrence et/ou l’intensité d’au moins un désagrément de la peau, des phanères et/ou des muqueuses, dit désagrément cutané. Le désagrément cutané peut notamment être choisi dans le groupe constitué par une rougeur, un tiraillement, une peau sèche, une peau sensible, une démangeaison, une irritation et une peau terne. Par « compris entre X et Y » , on désigne la gamme de valeurs comprises entre X et Y, les bornes X et Y étant incluses dans ladite gamme. Par « environ » une valeur nominale, on désigne dans la présente invention un intervalle compris entre plus et moins 10% de la valeur nominale, de préférence entre plus et moins 5% de la valeur nominale, en particulier entre plus et moins 1% de la valeur nominale. Par « équilibrer le microbiote cutané », on désigne l’action de maintenir, préserver et/ou rétablir l’équilibre du microbiote cutané. Equilibrer le microbiote cutané comprend favoriser le développement et/ou la croissance d’au moins un organisme considéré comme bénéfique à la peau, aux phanères et/ou aux muqueuses, et/ou limiter le développement et/ou la croissance d’au moins un organisme considéré comme non bénéfique à la peau, aux phanères et/ou aux muqueuses, et/ou rétablir la diversité des organismes à la surface de la peau, des phanères et/ou des muqueuses. Dans certains modes de réalisation, équilibrer le microbiote cutané comprend favoriser le développement et/ou la croissance de Staphylococcus epidermidis , et/ou limiter le développement et/ou la croissance d’au moins un organisme parmi Cutibacterium acnes et Staphylococcus aureus . Dans un mode de réalisation particulier, équilibrer le microbiote cutané comprend favoriser le développement et/ou la croissance de Staphylococcus epidermidis , et limiter le développement et/ou la croissance de Cutibacterium acnes et Staphylococcus aureus . Par « é vènement dysbiotique » ou « dysbiose » , on désigne un évènement au cours duquel l’équilibre du microbiote cutané est altéré, soit par croissance et/ou développement d’au moins un organisme considéré comme non bénéfique à la peau, aux phanères et/ou aux muqueuses, soit par diminution et/ou disparition d’au moins un organisme considéré comme bénéfique à la peau, aux phanères et/ou aux muqueuses. La dysbiose peut être à l'origine de nombreux désagréments et de pathologies cutanés. En cas de dysbiose, les réponses immunitaires de la peau, des phanères et/ou des muqueuses peuvent être modifiées et certaines espèces bactériennes pathogènes peuvent se développer davantage. Parmi les évènements dysbiotiques, on peut citer notamment ceux consécutifs à des pathologies cutanées telles que l’acné, le psoriasis, l'hidradénite suppurée ou maladie de Verneuil et la dermatite atopique. Dans certains modes de réalisation, l’évènement dysbiotique est l’acné et le déséquilibre du microbiote comprend le développement d’une souche de Propionibacterium acnes . Dans certains modes de réalisation, l’évènement dysbiotique est le psoriasis et le déséquilibre du microbiote comprend le développement de bactéries considérées comme non bénéfiques à la peau. Dans certains modes de réalisation, l’évènement dysbiotique est l'hidradénite suppurée ou maladie de Verneuil et le déséquilibre du microbiote comprend le développement de bactéries et une diversité des bactéries plus importante que dans le microbiote normal. Dans certains modes de réalisation, l’évènement dysbiotique est la dermatite atopique et le déséquilibre du microbiote comprend le développement de Staphylococcus aureus et une diversité des bactéries moins importante que dans le microbiote normal. Dans certains modes de réalisation, l’évènement dysbiotique est l’occurrence d’une peau sensible, d’une irritation, d’une démangeaison, d’une rougeur, d’un tiraillement et/ou d’une sécheresse cutanée. De préférence, l’occurrence d’une peau sensible, d’une irritation, d’une démangeaison, d’une rougeur, d’un tiraillement et/ou d’une sécheresse cutanée n’est pas pathologique ni associée à une pathologie cutanée. Par « Fructo-oligosaccharides » ou « FOS », on désigne des oligomères ayant un degré de polymérisation maximal de 10, composés de D-fructoses liés par des liaisons beta-1,2 et pouvant contenir une molécule de glucose à l’une des extrémités. Les FOS font partie des fructanes. Ils sont présents dans la nature dans un certain nombre de plantes comme l’oignon, la chicorée, l’artichaut, l’ail, la banane, l’asperge et la betterave. Ils peuvent aussi être produits industriellement par deux procédés différents : par hydrolyse partielle de l’inuline de chicorée par une endoinulinase spécifique (l’inuline étant un polymère linéaire de fructose lié en beta-2,1 avec à l’une des extrémités un glucose lié en alpha1-beta2) ou par synthèse enzymatique. Par « Fructo -oligosaccharide à chaîne courte » ou « scFOS », on désigne des fructo-oligosaccharides constitués de 2 à 4 molécules de fructose et contenant une molécule de glucose à l’une des extrémités. Dans un mode de réalisation, les fructo-oligosaccharides à chaîne courte sont issus de la betterave à sucre, du blé, de l’orge, du seigle, de la canne, de l’asperge, de la banane, de l’artichaut, de l’ail et/ou de l’oignon. Dans un mode de réalisation, les fructo-oligosaccharides sont issus de la betterave à sucre. De préférence, il s’agit des fructo-oligosaccharides commercialisés sous la dénomination commerciale Actilight®. Par « GF2 », « GF3 » et « GF4 », on désigne les dénominations données respectivement au 1-kestose, au nystose et au 1-bêta-fructofuranosylnystose. L’initiale G correspond à une unité de glucose et l’initiale F correspond à une unité de fructose. Par « microbiote de la peau » ou « microbiote cutané », on désigne la communauté de microorganismes opportunistes, saprobiontes, souvent symbiotes et parfois pathogènes qui composent la flore présente à la surface de la peau, des phanères et/ou des muqueuses. De préférence, le microbiote cutané est le microbiote présent à la surface de la peau et/ou des phanères. Dans un mode de réalisation, le microbiote cutané est le microbiote présent à la surface de la peau. Dans un autre mode de réalisation, le microbiote cutané est le microbiote présent à la surface des phanères. Dans un dernier mode de réalisation, le microbiote cutané est le microbiote présent à la surface des muqueuses. De préférence, le microbiote cutané est le microbiote cutané humain. Par « phanère s », on désigne les productions tégumentaires issues de l'ectoderme et caractérisées par un taux élevé de kératinisation. Dans un mode de réalisation, les phanères sont les cheveux, les poils et/ou les ongles. De préférence, les phanères sont les cheveux. Par « support cosmétiquement acceptable », on désigne tout adjuvant ou excipient permettant la fabrication, la conservation et/ou l'administration de la composition cosmétique. De préférence, il s’agit d’un milieu qui est compatible avec la peau, les phanères et/ou les muqueuses, ayant une couleur, une odeur et un ressenti plaisants, et ne causant aucun inconfort inacceptable (picotements, tiraillements ou rougeurs notamment) susceptible de décourager le consommateur d'utiliser la composition cosmétique. BRÈVE DESCRIPTION DES FIGURES est un graphique illustrant la croissance de S. epidermidis en présence de diverses quantités de scFOS à 0h, 8h et 24h. est un graphique illustrant la croissance de C. acnes en présence de diverses quantités de scFOS à 0h, 8h et 24h. est un graphique illustrant la croissance de S. aureus en présence de diverses quantités de scFOS à 0h, 8h et 24h. est un graphique illustrant la croissance de S. epidermidis en présence de diverses quantités de scFOS lorsqu’il est en compétition avec C. acnes à 0h, 8h et 24h. est un graphique illustrant la croissance de C. acnes en présence de diverses quantités de scFOS lorsqu’il est en compétition avec S. epidermidis à 0h, 8h et 24h. est un graphique illustrant la croissance de S. epidermidis en présence de diverses quantités de scFOS lorsqu’il est en compétition avec S. aureus à 0h, 8h et 24h. est un graphique illustrant la croissance de S. aureus en présence de diverses quantités de scFOS lorsqu’il est en compétition avec S. epidermidis à 0h, 8h et 24h. EXEMPLES La présente invention se comprendra mieux à la lecture de l’exemple suivant qui illustre non-limitativement l’invention. Exemple : Etude de l’effet des scFOS – ACTILIGHT® - sur différentes souches bactériennes La présente étude a évalué les effets de fructo-oligosaccharides à courte chaîne (scFOS, Actilight® P95, Beghin-Meiji) sur la croissance in vitro et l’activité compétitive de 3 souches bactériennes ( Staphyloccocus epidermidis , Cutibacterium acnes et Staphylococcus aureus ) représentatives du microbiote cutané humain. Matériel et méthode Souches bactériennes Staphylococcus epidermidis (ATCC® 12228) et Staphylococcus aureus (ATCC® 6538) ont été acquis de l'American Type Culture Collection (ATCC), tandis que Cutibacterium acnes (CCUG 1794T) a été acquis de la Culture Collection University of Gothenburg (CCGU). Les souches bactériennes ont été fournies dans un format lyophilisé et réactivées selon les indications de la banque de cellules respective. En bref, le culot entier a été remis en suspension avec 0,5 ml d'un milieu de croissance approprié (bouillon de soja tryptique (TSB) pour les souches de Staphylococcus et TSB + 5% de sang de mouton défibriné pour C. acnes (BTSB)). Une fois réhydratées, les suspensions obtenues ont été inoculées dans des tubes stériles contenant le milieu de croissance spécifique de la souche et, après mélange, incubées dans les conditions appropriées (soit 24h à 37 ° C en condition aérobie pour les souches de Staphylococcus et 48h à 37 ° C en condition anaérobie pour C. acnes ). Après 24 heures, les suspensions de souches de Staphylococcus ont été striées sur une plaque de gélose au sel de mannitol sélectif pour les staphylocoques, tandis que la suspension de C. acnes a été striée sur des plaques d'agar pour les bactéries exigeantes après 48h d'incubation. Après 24h et 48h d'incubation dans des conditions appropriées, une seule colonie pour chaque souche bactérienne, prélevée avec une boucle d'inoculation stérile, a été inoculée dans du milieu liquide TSB et BTSB. Lorsque les trois souches bactériennes ont atteint leur phase de croissance mi-log (24h pour les souches de Staphylococcus et 48h pour C. acnes ), la concentration de bactéries (charge bactérienne), en unité formant colonie par mL (UFC / mL), présente dans les inoculums, a été déterminée par densitométrie, suivie de comptages CFU après étalement sur gélose de dilutions bactériennes en série. Des inoculums de souches bactériennes fraîches ont été préparés avant chaque expérience pour assurer la cohérence du traitement. Préparation de Actilight® Actilight® a été préparé conformément à Rossi et al., 2005 (10). En bref, en fonction du milieu liquide dans lequel les expériences ont été effectuées, le scFOS a été pesé et dissous à la fois dans le TSB et le milieu minimal (0,9% NaCl dans de l'eau stérile + 0,003% de bouillon de phosphate tryptique (TPB) 1) à une concentration de 20% (p / v). Une fois que le scFOS a été complètement dissous, la stérilisation du milieu a été réalisée par autoclave (121 ° C pendant 20 min). Activité bactériostatique et bactéricide d es scFOS La capacité des scFOS à inhiber la croissance des souches bactériennes et / ou à les tuer a été évaluée avec un protocole standard pour la définition de la concentration minimale inhibitrice (CMI) et de la concentration bactéricide minimale (MBC). La CMI est définie comme la concentration la plus faible d'un agent qui empêche la croissance visible des bactéries, tandis que la MBC est la concentration la plus faible d'un agent antibactérien nécessaire pour tuer une bactérie sur une période fixe (généralement 8h et 24h). En bref, 10 x 10 6 UFC / mL de chaque souche bactérienne ont été exposés à une concentration croissante de scFOS (de 0 à 15% (p / v)), en milieu bouillon liquide (TSB pour S. aureus et S. epidermidis , et BTSB pour C. acnes ) pendant 24h à 37 ° C, sous agitation constante en conditions aérobies. L'impact des différentes concentrations de scFOS sur la croissance des souches bactériennes a été suivi avec une approche de plaque étalée. Des aliquots des inoculums ont été collectés à 0, 8 et 24h, dilués en série et ensemencés sur des plaques d'agar spécifiques (plaques d'agar au sel de mannitol pour les souches de Staphylococcus et gélose au sang pour C. acnes ). Après 24h ( S. aureus et S. epidermidis ) et 48h ( C. acnes ), les colonies visibles, formées sur les plaques étalées, ont été comptées. Une fois corrigée pour le facteur de dilution approprié, la croissance bactérienne a été calculée comme un facteur de changement par rapport au témoin (t = 0h). Impact de s scFOS sur la cinétique de croissance des souches bactériennes La capacité des souches bactériennes testées à utiliser scFOS comme source d'énergie, pour soutenir leur croissance, a été explorée en les exposant à différentes concentrations de scFOS dans un milieu liquide minimal. Brièvement, suite à une centrifugation et un lavage approfondi pour éliminer le milieu de croissance dans lequel elles ont été inoculées, les 3 bactéries (10 x 10 6 CFU / mL) ont été exposées à des concentrations croissantes de scFOS (de 0 à 15%) dans un milieu minimal à 37 ° C pendant 24h, sous agitation constante et dans des conditions aérobies. Comme décrit ci-dessus, l'impact des différentes concentrations de scFOS sur la croissance des souches bactériennes a été évalué avec une approche de plaque étalée. Des aliquots des inoculums ont été collectés à 8 et 24h, dilués en série et ensemencés sur des plaques d'agar spécifiques (plaques d'agar au sel de mannitol pour les souches de Staphylococcus et gélose au sang pour C. acnes ). Après 48h à 37 ° C dans des conditions aérobies, les colonies formées sur les différentes plaques étalées ont été comptées. Une fois corrigée du facteur de dilution approprié, la croissance bactérienne des 3 souches testées a été calculée comme un facteur de changement par rapport à la charge bactérienne de l'inoculum initial (t = 0h). Compétition entre les souches de bactéries pour scFOS La capacité des souches bactériennes à rivaliser pour les scFOS comme source d'énergie a été évaluée au travers des comparaisons S. epidermidis vs C. acnes et S. epidermidis vs S. aureus . Ces compétitions ont été réalisées à différentes concentrations de scFOS (de 0 à 5%) dans un milieu minimal. L'évolution de la compétition a été évaluée avec une approche par plaques étalées, basée sur un moyen sélectif et un comptage différentiel des colonies. En bref, après centrifugation et lavage approfondi pour éliminer le milieu de croissance, 10 x 10 6 CFU / mL de chaque souche concurrente ont été exposés à des concentrations croissantes de scFOS (de 0 à 5%) dans un milieu minimal (0,9% NaCl dans de l'eau stérile + 0,003% de TPB) à 37 ° C pendant 48h, sous agitation constante et dans des conditions aérobies. Des aliquotes des inoculums ont été prélevés à 0 (charge bactérienne initiale), 4, 8, 24 et 48 h, dilués en série et ensemencés sur des plaques d'agar spécifiques. Pour la compétition S. epidermidis vs S. aureus , l'ensemencement a été réalisé sur de la gélose au sel de mannitol phénol rouge (MSARP). Pour la compétition S. epidermidis vs C. acnes , une stratégie de comptage différentiel des colonies a été appliquée. En bref, les mêmes aliquotes, collectées à des moments différents, ont été ensemencées sur des plaques MSARP et de gélose au sang. Le nombre de CFU / mL de C. acnes a été calculé en soustrayant le nombre de colonies obtenu à partir des plaques MSARP, spécifiques pour S. epidermidis , à celle de la gélose au sang. Une fois corrigée du facteur de dilution approprié, la croissance des souches bactériennes concurrentes a été calculée comme un facteur de variation par rapport à la charge bactérienne de l'inoculum initial (t = 0h). Analyses statistiques Toutes les analyses statistiques ont été effectuées avec le logiciel OriginLab. Pour déterminer si des différences statistiquement significatives entre les traitements étaient présentes, une analyse de test t a été réalisée. Toutes les données sont présentées sous forme de moyenne ± écart-type (ET) de 3 expériences indépendantes. Les différences entre les groupes ont été considérées comme significatives à p Résultats Impact des scFOS sur la croissance bactérienne et la survie Avant d'étudier l'effet potentiel des scFOS en tant que prébiotique sur leur croissance, leur impact sur la croissance et la survie de S. epidermidis, C. acnes et S. aureus a été testé. Les expériences ont été réalisées en milieu de croissance bactérienne spécifique de chaque souche bactérienne (TSB pour S. aureus et S. epidermidis et BTSB pour C. acnes ). Comme le montre le tableau 1, aucun effet bactériostatique ou bactéricide du scFOS n'a été observé sur S. epidermidis , C. acnes et S. aureus , puisqu'une croissance significative par rapport à la charge bactérienne initiale a été mise en évidence à toutes les concentrations testées de scFOS. Une diminution des populations de S. epidermidis et de S. aureus , entre 8 et 24h à la même concentration a été observée, probablement due à l'épuisement progressif des nutriments, limitant la survie des bactéries. Une réduction significative de la croissance de C. acnes et S. aureus a été observée aux concentrations de scFOS les plus élevées (10 et 15% de scFOS). S. epidermidis C. acnes S. aureus scFOS (%) 0h 8h 24h 0h 8h 24h 0h 8h 24h 0 1.0 ± 0.1 26.7 ± 0.5 23.7 ± 6.3 1.0 ± 0.1 11.7 ± 1.0 0.3 ± 0.5 1.0 ± 0.2 262.9 ± 11.5 141.5 ± 30.1 1 1.0 ± 0.1 46.6 ± 4.6 15.2 ± 0.3 1.0 ± 0.1 10.5 ± 0.3 2.6 ± 0.2 1.0 ± 0.2 293.2 ± 36.2 196.4 ± 25.9 5 1.0 ± 0.1 45.2 ± 4.4 9.2 ± 0.2 1.0 ± 0.1 9.6 ± 1.3 1.0 ± 0.5 1.0 ± 0.2 227.6 ± 35.0 154.3 ± 32.5 10 1.0 ± 0.1 54.1 ± 9.3 3.4 ± 0.2 1.0 ± 0.1 2.9 ± 0.7 2.9 ± 2.2 1.0 ± 0.2 116.3 ± 22.3 82.7 ± 9.6 15 1.0 ± 0.1 63.5 ± 19.0 3.4 ± 0.6 1.0 ± 0.1 1.6 ± 0.1 0.3 ± 0.1 1.0 ± 0.2 130.4 ± 4.8 28.1 ± 19.3 Activité prébiotique du scFOS sur des souches bactériennes Dans un milieu minimal, la croissance des bactéries est significativement limitée en l'absence de scFOS (0%), pour garantir que la croissance bactérienne dépendait directement de la métabolisation de scFOS. Comme indiqué dans la , S. epidermidis a pu exploiter scFOS comme source d'énergie. En effet, sa charge bactérienne a augmenté significativement après 8h de 0,5 à 5% de scFOS et a eu tendance à augmenter jusqu'à 24h, en présence de 1 et 5% de scFOS. Cependant, des concentrations plus élevées de scFOS (10 et 15%) ont affecté négativement sa croissance par rapport au témoin (0% scFOS). À l'inverse de S. epidermidis , S. aureus et C. acnes n'ont pas été en mesure d'exploiter le scFOS comme source d'énergie car la croissance de ces souches bactériennes a toujours été significativement plus faible que celle en absence de scFOS, indépendamment des concentrations et du temps testés. Cependant, alors que la population de S. aureus était encore capable d'augmenter dans ces conditions, la croissance de la population de C. acnes a été complètement arrêtée. Une diminution significative de la population des deux bactéries de 8 à 24h a été observée, probablement en raison de l'épuisement progressif des quelques nutriments disponibles dans le milieu minimal qui, à son tour, a conduit à la mort des bactéries ( ). Concurrence des souches bactériennes pour les scFOS en milieu minimal La compétition pour scFOS entre S. epidermidis et C. acnes en milieu minimal a confirmé les résultats observés dans la section précédente. En effet, alors qu'aucun effet positif de scFOS sur la croissance de la population de C. acnes n'a été mis en évidence à 8h, la présence des scFOS a stimulé la croissance de S. epidermidis à toutes les doses testées jusqu'à 5% de scFOS ( ). Il en résulte un rapport de croissance positif de S. epidermidis / C. acnes à 8h, avec un maximum atteint à la dose de 1% scFOS (tableau 2). S. epidermidis / C. acnes growth ratio S. epidermidis / S. aureus growth ratio scFOS (%) 8h 24h 8h 24h 0 1.1 – 1.6 2.0 0.5 7.8 – 2.8 5.0 1 12.8 – 1.8 – 2.5 8.5 – 2.5 6.0 5 3.4 – 1.6 2.0 La compétition entre S. epidermidis et S. aureus a été caractérisée par des résultats similaires à ceux de la compétition testée précédemment, sans effet positif sur la croissance de S. aureus tandis que la croissance de S. epidermidis a été stimulée par un apport de scFOS à une dose comprise entre 0,5 et 2,5% après 8h de culture en milieu minimal ( ). Le rapport calculé entre la croissance de S. epidermidis et S. aureus a confirmé la capacité de S. epidermidis à croître en utilisant les scFOS au détriment de la croissance de S. aureus , avec la stimulation la plus élevée obtenue pour la plus petite dose de scFOS (0,5%) (Tableau 2). LISTE DES REFERENCES 1. Sfriso, R.; Egert, M.; Gempeler, M.; Voegeli, R.; Campiche, R. Revealing the secret life of skin - with the microbiome you never walk alone. Int J Cosmet Sci 2020. 42(2): p. 116-126, DOI: 10.1111/ics.12594. 2. Kong, H.H.; Segre, J.A. Skin microbiome: looking back to move forward. J Invest Dermatol 2012. 132(3 Pt 2): p. 933-9, DOI: 10.1038/jid.2011.417. 3. Sanford, J.A.; Gallo, R.L. Functions of the skin microbiota in health and disease. Semin Immunol 2013. 25(5): p. 370-7, DOI: 10.1016/j.smim.2013.09.005. 4. Krutmann, J. Pre- and probiotics for human skin. J Dermatol Sci 2009. 54(1): p. 1-5, DOI: 10.1016/j.jdermsci.2009.01.002. 5. Grice, E.A.; Segre, J.A. The skin microbiome. Nat Rev Microbiol 2011. 9(4): p. 244-53, DOI: 10.1038/nrmicro2537. 6. Ladizinski, B.; McLean, R.; Lee, K.C.; Elpern, D.J.; Eron, L. The human skin microbiome. Int J Dermatol 2014. 53(9): p. 1177-9, DOI: 10.1111/ijd.12609. 7. Al-Ghazzewi, F.H.; Tester, R.F. Impact of prebiotics and probiotics on skin health. Benef Microbes 2014. 5(2): p. 99-107, DOI: 10.3920/BM2013.0040. 8. Dreno, B.; Araviiskaia, E.; Berardesca, E.; Gontijo, G.; Sanchez Viera, M.; Xiang, L.F.; Martin, R.; Bieber, T. Microbiome in healthy skin, update for dermatologists. J Eur Acad Dermatol Venereol 2016. 30(12): p. 2038-2047, DOI: 10.1111/jdv.13965. 9. Grice, E.A.; Kong, H.H.; Renaud, G.; Young, A.C.; Program, N.C.S.; Bouffard, G.G.; Blakesley, R.W.; Wolfsberg, T.G.; Turner, M.L.; Segre, J.A. A diversity profile of the human skin microbiota. Genome Res 2008. 18(7): p. 1043-50, DOI: 10.1101/gr.075549.107. 10. Rossi, M.; Corradini, C.; Amaretti, A.; Nicolini, M.; Pompei, A.; Zanoni, S.; Matteuzzi, D. Fermentation of fructooligosaccharides and inulin by bifidobacteria: a comparative study of pure and fecal cultures. Appl Environ Microbiol 2005 . 71(10): p. 6150-8, DOI: 10.1128/AEM.71.10.6150-6158.2005. Méthode cosmétique pour équilibrer le microbiote cutané, comprenant une étape d’application sur tout ou partie de la peau, des phanères et/ou des muqueuses d’une composition cosmétique comprenant, dans un support cosmétiquement acceptable, au moins un fructo-oligosaccharide à chaîne courte. Méthode cosmétique selon la revendication 1, pour améliorer l’apparence et/ou le confort cutané. Méthode cosmétique selon la revendication 2, dans laquelle améliorer l’apparence et/ou le confort cutané comprend réduire au moins un désagrément cutané choisi dans le groupe constitué par les rougeurs, les tiraillements, la peau terne et les démangeaisons. Méthode cosmétique selon l’une quelconque des revendications 1 à 3, dans laquelle le au moins un fructo-oligosaccharide est issu de la betterave sucrière. Méthode cosmétique selon l’une quelconque des revendications 1 à 4, dans laquelle le au moins un fructo-oligosaccharide à chaîne courte est un mélange : - d’un fructo-oligosaccharide contenant une unité de glucose et deux unités de fructose, aussi appelé 1-kestose ou GF2, présentant un degré de polymérisation égal à 3 ; - d’un fructo-oligosaccharide contenant une unité de glucose et trois unités de fructose, aussi appelé nystose ou GF3, présentant un degré de polymérisation égal à 4 ; et - d’un fructo-oligosaccharide contenant une unité de glucose et quatre unités de fructose, aussi appelé 1-bêta-fructofuranosylnystose ou GF4, présentant un degré de polymérisation égal à 5. Méthode cosmétique selon l’une quelconque des revendications 1 à 5, dans laquelle équilibrer le microbiote cutané comprend favoriser le développement et/ou la croissance de Staphylococcus epidermidis , et/ou limiter le développement et/ou la croissance d’au moins un organisme parmi Cutibacterium acnes et Staphylococcus aureus . Méthode cosmétique selon l’une quelconque des revendications 1 à 6, dans laquelle la méthode est mise en œuvre après un événement dysbiotique. Utilisation d’une composition cosmétique comprenant, dans un support cosmétiquement acceptable, au moins un fructo-oligosaccharide à chaîne courte, pour équilibrer le microbiote cutané.