Brevet FR3120877A1 — publié le 20220923

L’invention concerne une cellule immunitaire comprenant au moins un récepteur Fc à sa surface, caractérisée en ce qu’une molécule hybride est greffée au niveau du récepteur Fc, ladite molécule hybride comprenant au moins un fragment Fc d’anticorps lié de façon covalente à au moins un peptide dérivé de fibrine comprenant un ou plusieurs résidu(s) citrullyl. La présente invention concerne également les utilisations d’une telle cellule greffée, ainsi que son procédé de production. (pas de figure) Cellule immunitaire comprenant un récepteur Fc à sa surface, et sur lequel est greffé une molécule hybride comprenant un fragment Fc d’anticorps et au moins un peptide citrulliné dérivé de la fibrine, et ses utilisations La présente invention concerne une cellule immunitaire comprenant au moins un récepteur Fc à sa surface, caractérisée en ce qu’une molécule hybride est greffée au niveau du récepteur Fc, ladite molécule hybride comprenant au moins un fragment Fc d’anticorps lié de façon covalente à au moins un peptide dérivé de fibrine comprenant un ou plusieurs résidu(s) citrullyl. La présente invention concerne également les utilisations d’une telle cellule greffée, ainsi que son procédé de production. Contexte de l’invention La polyarthrite rhumatoïde est le plus fréquent des rhumatismes inflammatoires ou arthrites, mais aussi la plus fréquente des maladies auto-immunes. La maladie est caractérisée par une inflammation chronique des articulations synoviales aboutissant à une destruction articulaire irréversible. La présence d’auto-anticorps de classe G dirigés contre les protéines citrullinées et appelés auto-anticorps anti-protéines citrullinées (ACPA), est hautement spécifique de la polyarthrite rhumatoïde. Les sérums des patients qui contiennent des ACPA, les cellules lymphocytaires qui les expriment à leur membrane et les patients eux-mêmes, sont dits ‘ACPA-positifs’. Plusieurs études ont démontré que ces ACPA sont au cœur des réactions auto-immunes propres à la maladie rhumatoïde et représentent ainsi une cible thérapeutique de choix. Les cibles antigéniques des ACPA ont été caractérisées. Ils sont notamment dirigés spécifiquement contre des formes désiminées ou citrullinées des chaînes polypeptidiques α et β de la fibrine, protéine abondante dans le tissu synovial inflammatoire. Cette citrullination correspond à la désimination enzymatique des résidus arginyl des chaînes polypeptidiques, sous l'action de peptidyl-arginine désiminases (PAD). Plus spécifiquement, les épitopes immunodominants reconnus par les ACPA sur les chaînes polypeptidiques α et β de la fibrine ont été caractérisés et publiés, notamment dans les demandes PCT/FR00/01857 ou PCT/FR2007/000758. Les cinq peptides citrullinés porteurs des épitopes immunodominants sont plus particulièrement les peptides nommés α36-50Cit (tel que représenté en SEQ ID NO : 5), α171-185Cit (tel que représenté en SEQ ID NO : 6), α501-515Cit (tel que représenté en SEQ ID NO : 14), α621-635Cit (tel que représenté en SEQ ID NO : 18) et β60-74Cit (tel que représenté en SEQ ID NO : 19). Les sérums de patients ACPA-positifs reconnaissent un ou plusieurs de ces cinq peptides. Sécrétés dans le tissu synovial rhumatoïde par des plasmocytes locaux, les ACPA y présentent une concentration élevée, à proximité de leur principale cible, la fibrine citrullinée, qui y est, elle aussi, abondante sous forme de dépôts interstitiels. La fixation des ACPA sur ces dépôts et donc la formation de complexes immuns immobilisés, fixant à leur tour les facteurs rhumatoïdes, autres auto-anticorps associés à la polyarthrite rhumatoïde et eux aussi sécrétés par des plasmocytes locaux, déclenche une cascade d’évènements pro-inflammatoires. La stimulation de cellules macrophagiques par ces macro-complexes immuns, essentiellement via leurs récepteurs Fcgamma membranaires, les conduit à sécréter des cytokines pro-inflammatoires et notamment du TNF-alpha qui a été identifié comme la principale cytokine responsable de l’inflammation rhumatoïde. A ce jour il n’existe pas de traitement curatif de la polyarthrite rhumatoïde. Les traitements visent uniquement à soigner les poussées et/ou prévenir leur apparition. Un objet de la présente invention est ainsi de fournir un traitement à la polyarthrite rhumatoïde. Les ACPA sont oligoclonaux et donc sécrétés par seulement quelques clones plasmocytaires, résultant eux-mêmes de la différenciation de quelques clones lymphocytaires B. En cas de polyarthrite rhumatoïde, des clones de lymphocytes B expriment à leur membrane des immunoglobulines porteuses de la spécificité ACPA (il s’agit de lymphocytes B ACPA-positifs), alors que les plasmocytes issus de la différenciation des clones lymphocytaires B ACPA-positifs (il s’agit de plasmocytes ACPA-positifs) sécrètent en abondance ces mêmes ACPA dans leur microenvironnement. La présente invention repose sur les résultats des Inventeurs montrant qu’il est possible de cibler les clones lymphocytaires B exprimant des ACPA à leur surface et de les éliminer à l’aide d’une cellule immunitaire « armée », c’est-à-dire une cellule exprimant un récepteur Fc à sa surface et sur lequel est greffé une molécule hybride comprenant (i) au moins un peptide dérivé de fibrine ayant au moins un résidu citrullyl et (ii) un fragment Fc d’immunoglobuline humaine. La molécule hybride est liée au récepteur Fc grâce à son fragment Fc. Ces molécules hybrides cibleront spécifiquement les lymphocytes B ACPA-positifs (à l’aide du peptide dérivé de fibrine ayant au moins un résidu citrullyl, qui est reconnu par lesdits ACPA) qui seront ensuite éliminées, après fixation du fragment Fc sur les récepteurs Fc des cellules immunitaires exprimant au moins un récepteur Fc. De telles cellules sont notamment les macrophages (les lymphoctes B ACPA-positifs sont ainsi éliminés par phagocytose) et/ou des cellules NK (les lymphocytes B ACPA-positifs sont ainsi éliminés par cytotoxicité à médiation cellulaire dépendante des anticorps - ADCC). En ciblant les clones lymphocytaires B exprimant des ACPA les cellules immunitaires greffées de l’invention visent ainsi à faire disparaître les ACPA de l’organisme des patients. Cellule immunitaire greffée avec une molécule hybride selon l’invention Dans un premier aspect, l’invention concerne une cellule immunitaire comprenant au moins un récepteur Fc à sa surface, caractérisée en ce qu’une molécule hybride est greffée au niveau du récepteur Fc, ladite molécule hybride comprenant au moins un fragment Fc d’anticorps lié de façon covalente à au moins un peptide dérivé de fibrine ayant au moins un résidu citrullyl, un espaceur étant optionnellement présent entre ledit fragment Fc et ledit peptide. Le schéma d’une telle construction est présenté en . Selon l’invention, une « cellule immunitaire » est une cellule du système immunitaire inné ou adaptatif qui exprime à sa surface au moins un récepteur Fc. Selon un mode de réalisation préféré, la cellule immunitaire est choisie parmi une cellule NK ou un macrophage. Selon l’invention, une « molécule hybride » s’entend d’une molécule ayant au moins deux composants de nature différente, en l’espèce le fragment Fc d’anticorps et ledit peptide. Selon l’invention, un « récepteur Fc » s’entend de la protéine transmembranaire qui réagit avec un fragment Fc, et qui contribue aux fonctions protectrices du système immunitaire. Le récepteur Fc s’entend du récepteur Fcgamma, Fcgamma néonatal, récepteur Fcalpha et récepteur Fcepsilon. Selon un mode de réalisation, le récepteur Fc est un récepteur Fcgamma, notamment FcγRIII (CD16). Selon l’invention, une « molécule hybride est greffée au niveau du récepteur Fc » signifie que la cellule immunitaire exprime à sa surface au moins un récepteur Fc et qu’une molécule hybride telle qu’ici définie est lié au récepteur Fc via un fragment Fc. Dans le cas où la cellule immunitaire exprime plusieurs récepteurs Fc à sa surface, plusieurs molécules hybrides peuvent ainsi être greffées sur la cellule immunitaire, i.e. une molécule hybride par récepteur. Selon l’invention, un « fragment Fc » d’anticorps s’entend de la région constante d'une immunoglobuline à l'exclusion du premier domaine de région constante d'immunoglobuline (i.e. CH1-CL). Ainsi le fragment Fc fait référence à un homodimère, chaque monomère comprenant les deux derniers domaines constants des IgA, IgD, IgG (i.e. CH2 et CH3), ou les trois derniers domaines constants des IgE et IgM (i.e. CH2, CH3 et CH4). Selon l’invention, l’expression « lié de façon covalente » s’entend d’une liaison covalente, c’est-à-dire une liaison chimique dans laquelle deux atomes se partagent deux électrons. Ladite liaison covalente peut être polaire ou non-polaire. Selon l’invention, un « espaceur » est un agent de liaison qui permet de lier de façon covalente un fragment Fc d’anticorps audit peptide dérivé de fibrine ayant au moins un résidu citrullyl, tout en éloignant ledit fragment Fc dudit peptide (diminuant ainsi un éventuel encombrement stérique). Par exemple, il peut s’agir d’une molécule ou d’un peptide. De manière préférée, l’espaceur ne modifie pas les propriétés physico-chimiques de la molécule hybride. La présence d’au moins un espaceur est avantageuse : elle permet de faciliter l’accessibilité indépendante des deux partenaires de la molécule hybride (le fragment Fc est plus facilement accessible pour se lier au récepteur Fc, de même que ledit peptide est plus facilement accessible pour se lier aux lymphocytes B ACPA-positifs), et/ou de stabiliser la molécule hybride, et/ou augmenter la solubilité de la molécule hybride. Selon un mode de réalisation, la molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention peut comprendre un ou plusieurs espaceurs. De préférence, la molécule hybride comprend un ou deux espaceurs. Selon un mode de réalisation, lorsqu’au moins un espaceur est présent dans ladite molécule hybride de l’invention, ledit fragment Fc est lié de façon covalente à un espaceur, ledit espaceur étant lui-même lié de façon covalente audit peptide. Selon un autre mode de réalisation, lorsqu’au moins deux espaceurs sont présents dans ladite molécule hybride de l’invention, ledit fragment Fc est lié de façon covalente à un premier espaceur, ledit premier espaceur étant lui-même lié de façon covalente à un deuxième espaceur et le deuxième espaceur est lui-même lié de façon covalente audit peptide. La liaison entre le fragment Fc et le peptide peut donc être directe, ou bien indirecte en présence d’espaceurs. Selon un mode de réalisation, la molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention peut comprendre au moins un peptide dérivé de fibrine ayant au moins un résidu citrullyl. Cela signifie que le fragment Fc peut être lié à un ou deux peptides. En effet, le fragment Fc comprend deux monomères, et le fragment Fc peut ainsi être lié de façon covalente à un peptide sur un seul des deux monomères, ou bien le fragment Fc peut être lié de façon covalente à un peptide sur chaque monomère. De préférence, lorsque deux peptides sont liés sur le fragment Fc, les deux peptides sont identiques, par exemple deux peptides de SEQ ID NO : 18 ou SEQ ID NO : 19. Selon un mode de réalisation, dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention, ledit espaceur est un polymère contenant un ou plusieurs motifs de répétition contenant le groupe éther. Selon un mode de réalisation particulier, ledit espaceur est le polyéthylène glycol de formule PEGn, dans laquelle n représente un nombre entier compris entre 1 et 100, préférentiellement entre 1 et 10, et notamment 1, 2, 3, 4 ou 8. Selon l’invention ledit polyéthylène glycol peut être fonctionnalisé, par exemple avec un groupement amine (PEGn-amine tel que PEG-NH 2 ). Selon l’invention « un nombre entier compris entre 1 et 100 » représente toutes les valeurs entières comprises entre 1 et 100, i.e ; 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31, 32, 33, 34, 35, 36, 37, 38, 39, 40, 41, 42, 43, 44, 45, 46, 47, 48, 49, 50, 51, 52, 53, 54, 55, 56, 57, 58, 59, 60, 61, 62, 63, 64, 65, 66, 67, 68, 69, 70, 71, 72, 73, 74, 75, 76, 77, 78, 79, 80, 81, 82, 83, 84, 85, 86, 87, 88, 89, 90, 91, 92, 93, 94, 95, 96, 97, 98, 99 et 100. Selon l’invention, l’expression « peptide dérivé de fibrine ayant au moins un résidu citrullyl » s’entend d’une molécule de fibrine ou de fibrinogène dans laquelle au moins un résidu arginyl a été substitué par un résidu citrullyl. Un « peptide dérivé de fibrine ayant au moins un résidu citrullyl » selon l’invention s’entend d’un peptide reconnu par les ACPA, et peut également être nommé un « peptide citrulliné ». De tels peptides peuvent être obtenus à partir de fragments de fibrine ou de fibrinogène naturels, recombinants ou de synthèse. De tels peptides peuvent également être directement synthétisés. Les acides aminés constituant le peptide peuvent être de série L ou D, de préférence de série L. Ladite substitution peut par exemple être réalisée par une étape de désimination enzymatique sous l'action de peptidyl-arginine désiminases (PAD). Un tel peptide peut aussi être obtenu en incorporant directement un ou plusieurs résidus citrullyl dans le peptide synthétisé. Selon un mode de réalisation, dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention, ledit peptide est dérivé de tout ou partie de la séquence de la chaine α ou β d’une fibrine de vertébré, par substitution d’au moins un résidu arginyl par un résidu citrullyl. Préférentiellement, ledit peptide est dérivé d’une séquence d’au moins 5 acides aminés consécutifs de la chaine α (notamment représentée par SEQ ID NO : 27) ou β (notamment représentée par SEQ ID NO : 28), d’une fibrine de vertébré. Encore plus particulièrement, ladite fibrine de vertébré est une fibrine de mammifère, de préférence humaine. Selon un mode de réalisation, dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention, le peptide a une taille d’au moins 2 acides aminés consécutifs, 3 acides aminés consécutifs, 4 acides aminés consécutifs, de préférence 5 acides aminés consécutifs, et encore plus préférentiellement entre 5 et 25 acides aminés. Selon l’invention, « entre 5 et 25 » s’entend de toutes les valeurs : 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24 et 25. Préférentiellement, ledit peptide a une taille comprise entre 10 et 20 acides aminés, plus particulièrement 15 acides aminés. Selon un mode de réalisation, dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention, le peptide est linéaire. Selon un mode de réalisation, dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention, le peptide peut être modifié de façon à améliorer sa réactivité vis-à-vis des ACPA. A titre d’exemple, les peptides peuvent être cyclisés, les peptides peuvent être de type rétro (les acides aminés de série L sont enchainés selon une séquence inverse de celle du peptide à reproduire), ou de type rétro-inverso (les acides aminés sont de type D au lieu de la série naturelle L et sont enchainés selon une séquence inverse de celle du peptide à reproduire). Selon un mode de réalisation encore plus particulier, dans ladite molécule hybride selon l’invention, la fonction carboxyle (COOH) terminale dudit peptide est remplacée par une fonction carboxamide (CONH 2 ). De préférence, dans le peptide de SEQ ID NO : 12, la fonction carboxyle (COOH) terminale dudit peptide est remplacée par une fonction carboxamide (CONH 2 ). A titre d’exemple, le peptide β60-74Cit (tel que représenté en SEQ ID NO : 19) présente avantageusement une telle fonction carboxamide. Selon un autre mode de réalisation, dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention, le peptide peut être modifié de façon à faciliter sa synthèse et/ou améliorer sa stabilité, par exemple par alkylation. Selon un mode de réalisation encore plus particulier, dans ladite molécule hybride selon l’invention, la fonction amine (NH 2 ) terminale dudit peptide est acétylée. De préférence, dans le peptide de SEQ ID NO : 1, la fonction amine terminale dudit peptide est acétylée. A titre d’exemple, le peptide α621-635Cit (tel que représenté en SEQ ID NO : 18) présente avantageusement une telle fonction amine (NH 2 ) terminale. Selon un mode de réalisation, dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention, les fonctions amine et carboxyle du peptide peuvent être sous forme du sel correspondant à l’acide ou à la base. Selon un mode de réalisation, dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention, ledit peptide comprend au moins un résidu citrullyl, et est choisi dans le groupe constitué par : a) un peptide défini par la séquence X 1 PAPPPISGGGYX 2 AX 3 (SEQ ID NO : 1) dans laquelle X 1 , X 2 , et X 3 représentent chacun un résidu citrullyl ou un résidu arginyl, et au moins l'un des résidus X1 ou X 2 ou X 3 est un résidu citrullyl ; b) un peptide défini par la séquence GPX 1 VVEX 2 HQSACKDS (SEQ ID NO : 2) dans laquelle X 1 et X 2 représentent chacun un résidu citrullyl ou un résidu arginyl, et au moins l'un des résidus X 1 ou X 2 est un résidu citrullyl ; c) un peptide défini par la séquence SGIGTLDGFX 1 HX 2 HPD (SEQ ID NO : 3) dans laquelle X 1 et X 2 représentent chacun un résidu citrullyl ou un résidu arginyl, et au moins l'un des résidus X 1 ou X 2 est un résidu citrullyl ; d) un peptide défini par la séquence VDIDIKIX 1 SCX 2 GSCS (SEQ ID NO : 4) dans laquelle X 1 et X 2 représentent chacun un résidu citrullyl ou un résidu arginyl, et au moins l'un des résidus X 1 ou X 2 est un résidu citrullyl ; e) un peptide défini par la séquence X 1 GHAKSX 2 PVX 3 GIHTS (SEQ ID NO : 12) dans laquelle X 1 , X 2 et X 3 représentent chacun un résidu citrullyl ou un résidu arginyl, et au moins l'un des résidus X 1 ou X 2 ou X 3 est un résidu citrullyl ; f) un peptide comprenant au moins 5 acides aminés consécutifs, dont au moins un résidu citrullyl, de l'un des peptides a) à e) ci-dessus. Selon un mode de réalisation particulier, dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention, ledit peptide comprend au moins un résidu citrullyl, et est choisi dans le groupe constitué par : - un peptide défini par la séquence SEQ ID NO : 1 dans laquelle au moins un résidu choisi parmi X 1 ou X 2 ou X 3 est un résidu citrullyl, ou un peptide comprenant un fragment d'au moins 5 acides aminés consécutifs de ladite séquence contenant ledit ou lesdits résidu(s) citrullyl ; - un peptide défini par la séquence SEQ ID NO : 2 dans laquelle au moins X 1 ou X 2 est un résidu citrullyl, ou un peptide comprenant un fragment d'au moins 5 acides aminés consécutifs de ladite séquence contenant ledit ou lesdits résidu(s) citrullyl ; - un peptide défini par la séquence SEQ ID NO : 3 dans laquelle au moins X 1 ou X 2 est un résidu citrullyl, ou un peptide comprenant un fragment d'au moins 5 acides aminés consécutifs de ladite séquence contenant ledit ou lesdits résidu(s) citrullyl ; - un peptide défini par la séquence SEQ ID NO : 4 dans laquelle au moins X 1 ou X 2 est un résidu citrullyl, ou un peptide comprenant un fragment d'au moins 5 acides aminés consécutifs de ladite séquence contenant ledit ou lesdits résidu(s) citrullyl ; - un peptide défini par la séquence SEQ ID NO : 12 dans laquelle au moins un résidu choisi parmi X 1 ou X 2 ou X 3 est un résidu citrullyl, ou un peptide comprenant un fragment d'au moins 5 acides aminés consécutifs de ladite séquence contenant ledit ou lesdits résidu(s) citrullyl. Selon un mode de réalisation encore plus particulier, dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention, ledit peptide comprend au moins un résidu citrullyl, et est choisi dans le groupe constitué par : - un peptide défini par la séquence SEQ ID NO : 1 dans laquelle X 1 , X 2 , et X 3 sont des résidus citrullyl, ou un peptide d'au moins 15 acides aminés comprenant ladite séquence (il s’agit d’un peptide de SEQ ID NO : 19) ; - un peptide défini par la séquence SEQ ID NO : 2 dans laquelle X 1 et X 2 sont des résidus citrullyl, ou un peptide comprenant un fragment d'au moins 5 acides aminés consécutifs de ladite séquence contenant lesdits résidus citrullyl (il s’agit d’un peptide de SEQ ID NO : 5) ; - un peptide défini par la séquence SEQ ID NO : 3 dans laquelle X 1 et X 2 sont des résidus citrullyl, ou un peptide comprenant un fragment d'au moins 5 acides aminés consécutifs de ladite séquence contenant lesdits résidus citrullyl (il s’agit d’un peptide de SEQ ID NO : 14) ; - un peptide défini par la séquence SEQ ID NO : 4 dans laquelle X 1 et X 2 sont des résidus citrullyl, ou un peptide comprenant un fragment d'au moins 5 acides aminés consécutifs de ladite séquence contenant lesdits résidus citrullyl (il s’agit d’un peptide de SEQ ID NO : 6) ; - un peptide défini par la séquence SEQ ID NO : 12 dans laquelle X 1 , X 2 et X 3 sont des résidus citrullyl, ou un peptide comprenant un fragment d'au moins 10 acides aminés consécutifs de ladite séquence contenant lesdits résidus citrullyl (il s’agit d’un peptide de SEQ ID NO : 18). Selon un mode de réalisation encore plus particulier, dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention, ledit peptide est choisi dans le groupe constitué par : SEQ ID NO : 5 (α36-50cit 38 , 42 ), SEQ ID NO : 6 (α171-185cit 178 , 181 ), SEQ ID NO : 7 (α183-197cit 186,190 ), SEQ ID NO : 8 (α246-260cit 258 ), SEQ ID NO : 9 (α259-273cit 263,271 ), SEQ ID NO : 10 (α366-380cit 367 ), SEQ ID NO : 11 (α396-410cit 404 ), SEQ ID NO : 13 (α411-425cit 425 ), SEQ ID NO : 14 (α501-515cit 510,512 ), SEQ ID NO : 15 (α546-560cit 547 ), SEQ ID NO : 16 (α561-575cit 573 ), SEQ ID NO : 17 (α588-602cit 591 ), SEQ ID NO : 18 (α621-635cit 621,627,630 ), SEQ ID NO : 19 (β60-74cit 60,72,74 ), SEQ ID NO : 20 (β210-224cit 224 ), SEQ ID NO : 21 (β281-295cit 285,294 ), SEQ ID NO : 22 (β420-434cit 421 ) et SEQ ID NO : 23 (β433-447cit 436 , 445 ), plus particulièrement choisi dans le groupe constitué par : SEQ ID NO : 5 (α36-50cit 38 , 42 ), SEQ ID NO : 6 (α171-185cit 178 , 181 ), SEQ ID NO : 14 (α501-515cit 510,512 ), SEQ ID NO : 18 (α621-635cit 621,627,630 ) et SEQ ID NO : 19 (β60-74cit 60,72,74 ), encore plus particulièrement choisi parmi SEQ ID NO : 18 (α621-635cit 621,627,630 ) et SEQ ID NO : 19 (β60-74cit 60,72,74 ). Selon un mode de réalisation, dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention, ledit fragment Fc est un fragment Fc humain, notamment d’IgG, plus particulièrement d’IgG1. L’IgG1 peut correspondre à n’importe quel variant allotypique par exemple G1m3 ou nG1m1. A titre d’exemple, le fragment Fc d’IgG1 est représenté par SEQ ID NO : 24, SEQ ID NO : 25 (Fc+Qtag) ou SEQ ID NO : 26 (Fc+Qtag bis). Selon un mode de réalisation, dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention, ledit fragment Fc est de type sauvage ou muté. La ou les mutations peuvent viser à augmenter la demi-vie plasmatique, la diminuer, modifier les fonctions effectrices du fragment Fc. Selon un mode de réalisation encore plus particulier, ledit fragment Fc muté comprend au moins les mutations suivantes : - L234A et L235A (LALA), ou - L234A, L235A et P329G (LALAPG), ou - G236A, S239D et I332E (GASDIE), ou - G236A, S239D, A330L et I332E (GASDALIE), ou - S239D, H268F, S324T et I332E (SDHFSTIE ou SDH), la numérotation étant indiquée dans la séquence d’une IgG1 humaine selon l’index EU. De telles mutations sont notamment décrites dans l’article Bruhns and Jönsson, Immunol Rev. 2015 Nov;268(1):25-51. De préférence, lorsque la molécule hybride est utilisée en thérapie, ledit fragment Fc muté comprend au moins les mutations GASDIE, GASDALIE, ou SDH. Selon un mode de réalisation, dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention, ledit fragment Fc présente un taux de fucosylation compris entre 0% à 100% des formes glycosylées. Selon l’invention « entre 0% et 100% » représente toutes les valeurs entières comprises entre 0 et 100, i.e ; 0, 1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, 10, 11, 12, 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24, 25, 26, 27, 28, 29, 30, 31, 32, 33, 34, 35, 36, 37, 38, 39, 40, 41, 42, 43, 44, 45, 46, 47, 48, 49, 50, 51, 52, 53, 54, 55, 56, 57, 58, 59, 60, 61, 62, 63, 64, 65, 66, 67, 68, 69, 70, 71, 72, 73, 74, 75, 76, 77, 78, 79, 80, 81, 82, 83, 84, 85, 86, 87, 88, 89, 90, 91, 92, 93, 94, 95, 96, 97, 98, 99 et 100%. Une faible fucosylation du fragment Fc provoque une forte réponse ADCC. C’est pourquoi selon un mode de réalisation particulier, ledit fragment Fc présente un taux de fucosylation compris entre 0% à 60% des formes glycosylées, notamment 50%, 40%, 30%, 20%, 10% ou 0%. Selon l’invention, le taux de fucosylation est défini comme la proportion moyenne de fucose portée par le fragment Fc, par rapport à la quantité maximale de fucose que peut porter un fragment Fc. Le fragment Fc et le peptide ont chacun des extrémités N- et Cterminale. Le fragment Fc peut donc être lié via son extrémité N- ou Cterminale à l’extrémité N- ou Cterminale du peptide. Selon un mode de réalisation, dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention, ladite liaison covalente se situe entre l’extrémité Cterminale dudit fragment Fc et l’extrémité Nterminale dudit peptide, ou entre l’extrémité Nterminale dudit fragment Fc et l’extrémité Nterminale dudit peptide. Selon un mode de réalisation, lorsqu’un espaceur est présent, l’espaceur peut être lié au fragment Fc via son extrémité N- ou Cterminale. Selon un autre mode de réalisation, lorsque deux espaceurs sont présents, le premier espaceur peut être lié au fragment Fc via son extrémité N- ou Cterminale et le deuxième espaceur peut être lié au peptide via son extrémité N- ou Cterminale, notamment Nterminale. Alternativement, ladite liaison covalente entre ledit fragment Fc et ledit peptide (éventuellement en présence d’un ou plusieurs espaceurs) peut être créée sur tout ou partie du fragment Fc. Selon l’invention « tout ou partie du fragment Fc » signifie que différents et/ou plusieurs acides aminés constituant le fragment Fc peuvent être impliqués dans une liaison covalente avec ledit peptide. Selon un mode de réalisation préféré, lorsqu’au moins un espaceur est présent dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention, celui-ci permet de lier le fragment Fc à un azoture ou à un alcyne qui sera lui-même impliqué dans la liaison covalente avec ledit peptide. Selon un mode de réalisation, lorsqu’au moins un espaceur est présent dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention, celui-ci peut également permettre de lier le peptide à un alcyne ou à un azoture qui sera lui-même impliqué dans la liaison covalente avec le fragment Fc. Selon un mode de réalisation préféré, la molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention comprend au moins deux espaceurs : un premier espaceur qui permet de lier le fragment Fc à un azoture ou à un alcyne et un deuxième espaceur qui permet de lier le peptide à un azoture (lorsque le fragment Fc est lié à un alcyne) ou à un alcyne (lorsque le fragment Fc est lié à un azoture). Selon un mode de réalisation selon l’invention, dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention, ledit fragment Fc : - est couplé à au moins un azoture ou à un alcyne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO, ou - est lié à au moins un espaceur qui est lui-même couplé à un azoture ou à un alcyne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO, et ledit peptide est soit couplé à un azoture ou à un alcyne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO, soit lié à un espaceur qui est lui-même couplé à un azoture ou à un alcyne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO, la liaison covalente entre ledit fragment Fc et ledit peptide, éventuellement en présence d’un ou plusieurs espaceurs, étant créée entre l‘azoture et l’alcyne. Selon un mode de réalisation selon l’invention, dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention, - le fragment Fc est couplé à au moins un azoture et ledit peptide est couplé à un alcyne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO, ou - le fragment Fc est couplé à au moins un alcyne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO, et ledit peptide est couplé à un azoture, la liaison covalente entre ledit fragment Fc et ledit peptide étant créée entre l‘azoture et l’alcyne. Selon un mode de réalisation selon l’invention, dans ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention : - le fragment Fc est couplé à au moins un azoture et ledit peptide est lié à un espaceur, lui-même couplé à un alcycne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO ou - le fragment Fc est couplé à au moins un alcyne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO, et ledit peptide est lié à un espaceur, lui-même couplé à un azoture ou - le fragment Fc est lié à au moins un espaceur, lui-même couplé à un azoture, et ledit peptide est couplé à un alcycne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO ou - le fragment Fc est lié à au moins un espaceur, lui-même couplé à un alcycne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO, et ledit peptide est couplé à un azoture ou - le fragment Fc est lié à au moins un espaceur, lui-même couplé à un azoture, et ledit peptide est lié à un espaceur, lui-même couplé à un alcycne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO ou - le fragment Fc est lié à au moins un espaceur, lui-même couplé à un alcycne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO, et ledit peptide est lié à un espaceur, lui-même couplé à un azoture, la liaison covalente entre ledit fragment Fc et ledit peptide, en présence d’un ou plusieurs espaceurs, étant créée entre l’azoture et l’alcyne. Selon un mode de réalisation, dans les molécules décrites ci-dessus qui sont greffées sur la cellule immunitaire, plus particulièrement aux paragraphes [0042] à [0044], l’espaceur utilisé est de préférence un espaceur PEGn, n représentant plus particulièrement un entier compris entre 1 et 10. Lorsque la molécule hybride selon l’invention comprend au moins deux espaceurs PEGn, les n des deux espaceurs peuvent être identiques ou différents. Par exemple le premier espaceur peut être un PEG 2 et le deuxième espaceur peut être un PEG 3 ou PEG 4 . Selon un mode de réalisation particulièrement préféré, dans les molécules décrites ci-dessus qui sont greffées sur la cellule immunitaire, plus particulièrement aux paragraphes [0043] à [0045], le peptide est dérivé de fibrine ou fibrinogène humain et le fragment Fc est un Fc humain, de préférence d’IgG1 humaine. Selon l’invention, la création de la liaison covalente entre l’azoture et l’alcyne correspond à une étape dite de « chimie-click », la partie N 3 de l’azoture réagissant avec un alcyne. L’azoture s’entend des sels de l'acide azothydrique HN 3 , ou des azotures organiques dans lesquels un des atomes d'azote est lié de façon covalente avec un atome de carbone d'un composé organique (par exemple l’azoture de méthyle CH 3 N 3 ). Préférentiellement l’azoture est représenté par la formule N 3 . L’alcyne s’entend des molécules ayant pour formule générale C n H 2n-2 , et qui sont caractérisées par la présence d’au moins une triple liaison. Préférentiellement l’alcyne est un cyclooctyne, encore plus préférentiellement le dibenzocyclooctyne (DBCO). Le fragment Fc, ledit peptide et éventuellement ledit espaceur, sont couplés à l’alcyne ou à l’azoture par toute technique de couplage moléculaire classiquement utilisée (telle qu’une conjugaison). Toute technique peut également être utilisée pour lier de façon covalente le fragment Fc à l’espaceur et/ou le peptide à l’espaceur. Plus particulièrement, une technique de conjugaison s’entend d’une conjugaison enzymatique ou d’une conjugaison chimique. Une conjugaison enzymatique s’entend par exemple d’une conjugaison à l’aide d’une transglutaminase qui catalyse la formation de liaisons covalentes entre des groupes amines libres et des résidus de glutamine ou de lysine ou encore à l’aide d’une transpeptidase telle que la sortase. Pour de plus amples informations concernant la conjugaison enzymatique, voir par exemple la demande de brevet US20160361434 ou US20170313787, ou encore la publication Ohtsuka et al., Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry Volume 64, 2000 - Issue 12, Comparison of Substrate Specificities of Transglutaminases Using Synthetic Peptides as Acyl donors. Le substrat de la transglutaminase est par exemple un peptide comportant un résidu glutamyl (un Qtag), tel que représenté par SEQ ID NO : 29 (LLQG). Une conjugaison chimique s’entend par exemple d’une liaison covalente entre une cystéine isolée ou participant à un pont disulfure après réduction de celui-ci et par exemple un maléimide. Un exemple d’une telle conjugaison est représenté en . Dans cet exemple, le fragment Fc comprend un peptide Qtag et ledit fragment Fc est lié à un espaceur (lui-même couplé à un azoture), grâce à l’action de la transglutaminase qui va créer une liaison covalente entre le résidu glutamyl du Qtag et le groupe NH 2 porté par l’espaceur PEGn. Selon l’invention, le terme « couplé » ou « couplage moléculaire » s’entend de l’établissement d’une liaison covalente, ainsi le fragment Fc et/ou le peptide et/ou l’espaceur est lié de façon covalente à un alcyne ou un azoture. Le terme « lié » s’entend également d’une liaison covalente. Ainsi, à titre d’exemple, l’expression « le fragment Fc est couplé à un azoture et ledit peptide est lié à un espaceur, lui-même couplé à un alcycne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO » peut également se lire « le fragment Fc est lié de façon covalente à un azoture et ledit peptide est lié de façon covalente à un espaceur, ledit espaceur étant lui-même lié de façon covalente à un alcycne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO ». Selon l’invention, la molécule hybride est greffée sur la cellule immunitaire grâce à la liaison entre le récepteur Fc et le fragment Fc. Selon un mode de réalisation selon l’invention, ladite molécule hybride greffée sur la cellule immunitaire selon l’invention est représentée par : - un fragment Fc de type sauvage qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne qui est couplé à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (β60-74cit 60,72,74 ) ou SEQ ID NO : 18 (α621-635cit 621,627,630 ), - un fragment Fc comprenant les mutations S239D, H268F, S324T et I332E qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne qui est couplé à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (β60-74cit 60,72,74 ) ou SEQ ID NO : 18 (α621-635cit 621,627,630 ), - un fragment Fc comprenant les mutations L234A, L235A et P329G qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne qui est couplé à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (β60-74cit 60,72,74 ) ou SEQ ID NO : 18 (α621-635cit 621,627,630 ), - un fragment Fc de type sauvage qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un cyclooctyne lié de façon covalente à un azoture couplé à un espaceur PEGn lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (β60-74cit 60,72,74 ) ou SEQ ID NO : 18 (α621-635cit 621,627,630 ), - un fragment Fc comprenant les mutations S239D, H268F, S324T et I332E qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un cyclooctyne lié de façon covalente à un azoture couplé à un espaceur PEGn lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (β60-74cit 60,72,74 ) ou SEQ ID NO : 18 (α621-635cit 621,627,630 ), - un fragment Fc comprenant les mutations L234A, L235A et P329G qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un cyclooctyne lié de façon covalente à un azoture couplé à un espaceur PEGn lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (β60-74cit 60,72,74 ) ou SEQ ID NO : 18 (α621-635cit 621,627,630 ), - un fragment Fc de type sauvage qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (β60-74cit 60,72,74 ) ou SEQ ID NO : 18 (α621-635cit 621,627,630 ), - un fragment Fc comprenant les mutations S239D, H268F, S324T et I332E qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (β60-74cit 60,72,74 ) ou SEQ ID NO : 18 (α621-635cit 621,627,630 ), - un fragment Fc comprenant les mutations L234A, L235A et P329G qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (β60-74cit 60,72,74 ) ou SEQ ID NO : 18 (α621-635cit 621,627,630 ), - un fragment Fc comprenant les mutations G236A, S239D et I332E, qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (β60-74cit 60,72,74 ) ou SEQ ID NO : 18 (α621-635cit 621,627,630 ), - un fragment Fc comprenant les mutations G236A, S239D, A330L et I332E qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (β60-74cit 60,72,74 ) ou SEQ ID NO : 18 (α621-635cit 621,627,630 ), - un fragment Fc comprenant les mutations G236A, S239D et I332E qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne qui est couplé à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (β60-74cit 60,72,74 ) ou SEQ ID NO : 18 (α621-635cit 621,627,630 ), - un fragment Fc comprenant les mutations G236A, S239D, A330L et I332E qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne qui est couplé à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (β60-74 cit60,72,74 ) ou SEQ ID NO : 18 (α621-635cit 621,627,630 ), n représentant de préférence un entier entre 1 et 10, plus particulièrement 1, 2, 3, 4 ou 8. Selon un mode de réalisation selon l’invention, ladite molécule hybride est représentée par : - un fragment Fc de type sauvage qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne qui est couplé à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (β60-74cit 60,72,74 ) ou SEQ ID NO : 18 (α621-635cit 621,627,630 ), - un fragment Fc comprenant les mutations S239D, H268F, S324T et I332E qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne qui est couplé à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (β60-74cit 60,72,74 ) ou SEQ ID NO : 18 (α621-635cit 621,627,630 ), - un fragment Fc comprenant les mutations L234A, L235A et P329G qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne qui est couplé à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (β60-74cit 60,72,74 ) ou SEQ ID NO : 18 (α621-635cit 621,627,630 ), - un fragment Fc de type sauvage qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (β60-74cit 60,72,74 ) ou SEQ ID NO : 18 (α621-635cit 621,627,630 ), - un fragment Fc comprenant les mutations S239D, H268F, S324T et I332E qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (β60-74cit 60,72,74 ) ou SEQ ID NO : 18 (α621-635cit 621,627,630 ), n représentant de préférence un entier entre 1 et 10, plus particulièrement 1, 2, 3, 4 ou 8. Selon un mode de réalisation encore plus particulier selon l’invention, ladite molécule hybride est représentée par : - un fragment Fc de type sauvage qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne qui est couplé à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (β60-74cit 60,72,74 ), - un fragment Fc comprenant les mutations S239D, H268F, S324T et I332E qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne qui est couplé à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (β60-74cit 60,72,74 ), - un fragment Fc comprenant les mutations L234A, L235A et P329G qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne qui est couplé à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (β60-74cit 60,72,74 ), - un fragment Fc de type sauvage qui est lié à un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à au moins un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (β60-74cit 60,72,74 ) ou SEQ ID NO : 18 (α621-635cit 621,627,630 ), - un fragment Fc comprenant les mutations S239D, H268F, S324T et I332E qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (β60-74cit 60,72,74 ) ou SEQ ID NO : 18 (α621-635cit 621,627,630 ), n représentant de préférence un entier entre 1 et 10, plus particulièrement 1, 2, 3, 4 ou 8. Utilisation des molécules hybrides selon l’invention Dans un second aspect, la présente invention concerne également une cellule immunitaire sur laquelle est greffée une molécule hybride telle que définie précédemment, pour son utilisation comme médicament. Plus particulièrement, selon l’invention, lesdites cellules immunitaires sur lesquelles sont greffées les molécules hybrides sont destinées à cibler et à lyser dans l’organisme des patients, par ADCC et/ou phagocytose et/ou activation du complément, toutes les cellules B « ACPA-positives » (i.e. les lymphocytes B qui expriment à leur surface les auto-anticorps anti-protéines citrullinées (ACPA)). En effet, la molécule hybride selon l’invention se lie aux lymphocytes B « ACPA-positifs » grâce au peptide dérivé de fibrine ayant au moins un résidu citrullyl : il s’agit de la cible épitopique dudit ACPA. La molécule hybride selon l’invention se lie aussi aux cellules permettant de détruire les lymphocytes B « ACPA-positifs », les cellules immunitaires exprimant un récepteur Fc, grâce à son fragment Fc, ligand naturel des récepteurs Fc, (par exemple Fcgamma récepteur (FcγR) si le fragment Fc est issu d’une IgG), présents notamment à la surface des macrophages mais aussi des cellules NK (“Natural killers“). Selon un mode de réalisation particulier, l’invention concerne une cellule immunitaire sur laquelle est greffée une molécule hybride, telle que définie précédemment pour son utilisation dans le traitement des maladies auto-immunes associées à la production d’auto-anticorps anti-protéines citrullinées, en particulier le syndrome de Gougerot-Sjögren et la polyarthrite rhumatoïde. Dans ce mode de réalisation, les formes sévères desdites maladies auto-immunes associées à la production d’auto-anticorps anti-protéines citrullinées sont ciblées, de même que diverses formes dites « frontières » avec d’autres arthrites chroniques, telles que l’arthrite psoriasique ou le lupus érythémateux disséminé. Selon un mode de réalisation, l’invention concerne également une composition pharmaceutique comprenant une cellule immunitaire sur laquelle est greffée une molécule hybride, telle que définie précédemment, en combinaison avec un véhicule pharmaceutiquement acceptable. Selon l’invention « un véhicule pharmaceutiquement acceptable » s’entend de toute formulation rendant la composition apte à être administrée à un patient, sous n’importe quelle forme galénique. Comme indiqué ci-dessus, la présente invention vise à détruire les lymphocytes B « ACPA-positifs ». Cependant, les lymphocytes B « ACPA-positifs » qui se sont différenciés en plasmocytes sécréteurs d’ACPA ne sont plus ciblés par les molécules hybrides précédemment décrites. Selon un mode de réalisation particulier, la présente invention concerne ainsi une cellule immunitaire telle que précédemment décrite, pour son utilisation comme médicament, en combinaison avec une molécule hybride (cette deuxième molécule hybride n’étant pas greffée sur la cellule immunitaire). Ladite deuxième molécule hybride comprend au moins un peptide dérivé de fibrine ayant au moins un résidu citrullyl, ledit peptide étant lié de façon covalente à au moins un anticorps ou à au moins un fragment d’anticorps, ledit anticorps ou fragment étant capable de se lier à CD38 et/ou CD138, un ou plusieurs espaceurs étant optionnellement présents entre ledit peptide et ledit anticorps ou ledit fragment. Une telle thérapie de combinaison permet de cibler et détruire spécifiquement les clones plasmocytaires et lymphocytaires B ACPA-positifs, et ainsi de faire disparaître les ACPA de l’organisme des patients. L’anticorps utilisé dans cette deuxième molécule hybride est de préférence un anticorps monoclonal. Selon un mode de réalisation particulier, dans cette deuxième molécule hybride, le fragment s’entend d’une portion d’anticorps qui est porteuse du site de liaison à l’antigène. De tels fragments d’anticorps sont par exemple Fab, F(ab’)2, Fv, dsFv, scFv, les fragments simples chaines tel que les fragments VH ou VL isolés, les VHH de camélidés, les VNAR de poisson cartilagineux, ou encore des anticorps multispécifiques composés de différents fragments, tels que des anticorps bi-spécifiques, ou encore des « nanobodies » « diabodies », « triabodies », « tetrabodies », ou des scFv en tandem, ... Ces fragments sont bien connus de l’homme du métier. De plus amples informations concernant ces fragments et constructions sont par exemple décrites dans la demande internationale WO2017137579, Bird et al., 1988 Science 242:423-426; and Huston et al., 1988 Proc. Natl. Acad. Sci. 85:5879-5883, ou encore Nelson, mAbs 2:1, 77-83; January/February 2010. De préférence le fragment est un Fab ou F(ab’)2. Selon un mode de réalisation particulier, dans cette deuxième molécule hybride ledit anticorps ou fragment F(ab’)2 est un anticorps ou fragment F(ab’)2 bispécifique dirigé contre CD38 et une autre cible plasmocytaire. Alternativement, dans cette deuxième molécule hybride ledit anticorps ou fragment F(ab’)2 est un anticorps ou fragment F(ab’)2 bispécifique dirigé contre CD138 et une autre cible plasmocytaire. Selon l’invention, une « autre cible plasmocytaire » s’entend de tout marqueur étant exprimé à la surface des plasmocytes. Selon un autre mode de réalisation particulier, dans cette deuxième molécule hybride ledit anticorps ou fragment F(ab’) 2 est un anticorps ou fragment F(ab’) 2 bispécifique dirigé contre CD38 et CD138. Selon ce mode de réalisation particulier de l’invention, la cellule immunitaire greffée et la deuxième molécule hybride sont administrées de façon simultanée, séparée ou étalée dans le temps. Selon un autre mode de réalisation, la molécule hybride selon l’invention greffée sur la cellule immunitaire telle que précédemment décrite peut être couplée à au moins un radioisotope ou à au moins un fluorochrome, tels que A488 ou A647. De telles molécules peuvent avantageusement être utilisées comme outils moléculaires traceurs. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne ainsi l’utilisation in vitro ou ex vivo d’une cellule immunitaire comprenant au moins un récepteur Fc à sa surface sur laquelle est greffée une molécule hybride, ladite molécule hybride comprenant au moins un fragment Fc d’anticorps lié de façon covalente à au moins un peptide dérivé de fibrine ayant au moins un résidu citrullyl, au moins un espaceur étant optionnellement présent entre ledit fragment Fc et ledit peptide, comme outil moléculaire. De telles constructions peuvent notamment être utilisées pour analyser la fixation des molécules hybrides aux ACPA et aux récepteurs Fc des macrophages et des cellules NK, ainsi que pour analyser la réactivité des macrophages et des cellules NK à la fixation des hybrides suivie du pontage de ceux-ci par les ACPA…. Les radioisotopes et/ou fluorochromes sont de préférence couplés sur le fragment Fc, encore plus particulièrement au niveau du Qtag (si présent) ou au niveau des lysines. Procédé de production des molécules hybrides selon l’invention Dans un autre aspect, l’invention concerne également un procédé permettant d’obtenir une cellule immunitaire greffée avec une molécule hybride telle que définie précédemment. Selon un mode de réalisation, l’invention concerne ainsi un procédé de production d’une cellule immunitaire greffée avec une molécule hybride telle que définie précédemment, comprenant les étapes suivantes : - (i) obtention d’un azoture couplé à un fragment Fc ou obtention d’un alcyne couplé à un fragment Fc, - (ii) obtention d’un alcyne couplé à un peptide ou obtention d’un azoture couplé à un peptide, - (iii) réalisation de la liaison covalente entre l’azoture et l’alcyne, - (iv) mise en contact d’une cellule immunitaire comprenant au moins un récepteur Fc à sa surface et une molécule hybride telle qu’obtenue à l’étape (iii), - l’étape (i) pouvant être réalisée avant ou après l’étape (ii), ou bien de façon concomitante. Selon un mode de réalisation, l’invention concerne ainsi un procédé de production d’une cellule immunitaire greffée avec une molécule hybride telle que définie précédemment, comprenant les étapes suivantes : - (i) couplage d’un azoture et d’un fragment Fc, éventuellement en présence d’un espaceur, ou couplage d’un alcyne et d’un fragment Fc, éventuellement en présence d’un espaceur, - (ii) couplage d’un alcyne et d’un peptide, éventuellement en présence d’un espaceur, ou couplage d’un azoture et d’un peptide, éventuellement en présence d’un espaceur, - (iii) réalisation de la liaison covalente entre l’azoture et l’alcyne, - (iv) mise en contact d’une cellule immunitaire comprenant au moins un récepteur Fc à sa surface et une molécule hybride telle qu’obtenue à l’étape (iii), - l’étape (i) pouvant être réalisée avant ou après l’étape (ii), ou bien de façon concomitante. Selon un autre mode de réalisation, l’invention concerne ainsi un procédé de production cellule immunitaire greffée avec une molécule hybride telle que définie précédemment, comprenant les étapes suivantes : - (i) couplage d’au moins un azoture sur chaque monomère du fragment Fc, éventuellement en présence d’au moins un espaceur, ou couplage d’au moins un alcyne sur chaque monomère du fragment Fc, éventuellement en présence d’un espaceur, - (ii) couplage d’un alcyne et d’un peptide, éventuellement en présence d’un espaceur, ou couplage d’un azoture et d’un peptide, éventuellement en présence d’un espaceur, - (iii) réalisation de la ou les liaison(s) covalente(s) entre l’azoture et l’alcyne, - (iv) mise en contact d’une cellule immunitaire comprenant au moins un récepteur Fc à sa surface et une molécule hybride telle qu’obtenue à l’étape (iii), - l’étape (i) pouvant être réalisée avant ou après l’étape (ii), ou bien de façon concomitante. Les séquences de l’invention sont représentées dans le Tableau 1 ci-après. Numéro de la séquence / Nom de la séquence le cas échéant Séquence SEQ ID NO : 1 X 1 PAPPPISGGGYX 2 AX 3 SEQ ID NO : 2 GPX 1 VVEX 2 HQSACKDS SEQ ID NO : 3 SGIGTLDGFX 1 HX 2 HPD SEQ ID NO : 4 VDIDIKIX 1 SCX 2 GSCS SEQ ID NO : 12 X 1 GHAKSX 2 PVX 3 GIHTS SEQ ID NO : 5 / α36-50cit 38 , 42 GPXVVEXHQSACKDS, X représentant un résidu citrullyl SEQ ID NO : 6 / α171-185cit 178 , 181 VDIDIKIXSCXGSCS, X représentant un résidu citrullyl SEQ ID NO : 7 / α183-197cit 186,190 SCSXALAXEVDLKDY, X représentant un résidu citrullyl SEQ ID NO : 8/ α246-260cit 258 PEWKALTDMPQMXME, X représentant un résidu citrullyl SEQ ID NO : 9 / α259-273cit 263,271 MELEXPGGNEITXGG, X représentant un résidu citrullyl SEQ ID NO : 10 / α366-380cit 367 EXGSAGHWTSESSVS, X représentant un résidu citrullyl SEQ ID NO : 11 / α396-410cit 404 DSPGSGNAXPNNPDW, X représentant un résidu citrullyl SEQ ID NO : 13 / α411-425cit 425 GTFEEVSGNVSPGTX, X représentant un résidu citrullyl SEQ ID NO : 14 / α501-515cit 510,512 SGIGTLDGFXHXHPD, X représentant un résidu citrullyl SEQ ID NO : 15 / α546-560cit 547 SXGSESGIFTNTKES, X représentant un résidu citrullyl SEQ ID NO : 16 / α561-575cit 573 SSHHPGIAEFPSXGK, X représentant un résidu citrullyl SEQ ID NO : 17 / α588-602cit 591 SYNXGDSTFESKSYK, X représentant un résidu citrullyl SEQ ID NO : 18 / α621-635cit 621,627,630 XGHAKSXPVXGIHTS, X représentant un résidu citrullyl SEQ ID NO : 19 / β60-74cit 60,72,74 XPAPPPISGGGYXAX, X représentant un résidu citrullyl SEQ ID NO : 20 / β210-224cit 224 QKLESDVSAQMEYCX, X représentant un résidu citrullyl SEQ ID NO : 21 / β281-295cit 285,294 VIQNXQDGSVDFGXK, X représentant un résidu citrullyl SEQ ID NO : 22 / β420-434cit 421 PXKQCSKEDGGGWWY, X représentant un résidu citrullyl SEQ ID NO : 23 / β433-447cit 436 , 445 WYNXCHAANPNGXYY, X représentant un résidu citrullyl SEQ ID NO : 24 / Fragment Fc APELLGGPSVFLFPPKPKDTLMISRTPEVTCVVVDVSHEDPEVKFNWYVDGVEVHNAKTKPREEQYNSTYRVVSVLTVLHQDWLNGKEYKCKVSNKALPAPIEKTISKAKGQPREPQVYTLPPSREEMTKNQVSLTCLVKGFYPSDIAVEWESNGQPENNYKTTPPVLDSDGSFFLYSKLTVDKSRWQQGNVFSCSVMHEALHNHYTQKSLSLSPGK SEQ ID NO : 25 / Fragment Fc + Qtag LLQGARSDATHTCPPCPAPELLGGPSVFLFPPKPKDTLMISRTPEVTCVVVDVSHEDPEVKFNWYVDGVEVHNAKTKPREEQYNSTYRVVSVLTVLHQDWLNGKEYKCKVSNKALPAPIEKTISKAKGQPREPQVYTLPPSREEMTKNQVSLTCLVKGFYPSDIAVEWESNGQPENNYKTTPPVLDSDGSFFLYSKLTVDKSRWQQGNVFSCSVMHEALHNHYTQKSLSLSPGK SEQ ID NO : 26 / Fragment Fc + Qtag bis AHGHGHGLLQGARSDATHTCPPCPAPELLGGPSVFLFPPKPKDTLMISRTPEVTCVVVDVSHEDPEVKFNWYVDGVEVHNAKTKPREEQYNSTYRVVSVLTVLHQDWLNGKEYKCKVSNKALPAPIEKTISKAKGQPREPQVYTLPPSREEMTKNQVSLTCLVKGFYPSDIAVEWESNGQPENNYKTTPPVLDSDGSFFLYSKLTVDKSRWQQGNVFSCSVMHEALHNHYTQKSLSLSPGK SEQ ID NO : 27 / Chaine α de fibrine GPRVVERHQSACKDSDWPFCSDEDWNYKCPSGCRMKGLIDEVNQDFTNRINKLKNSLFEYQKNNKDSHSLTTNIMEILRGDFSSANNRDNTYNRVSEDLRSRIEVLKRKVIEKVQHIQLLQKNVRAQLVDMKRLEVDIDIKIRSCRGSCSRALAREVDLKDYEDQQKQLEQVIAKDLLPSRDRQHLPLIKMKPVPDLVPGNFKSQLQKVPPEWKALTDMPQMRMELERPGGNEITRGGSTSYGTGSETESPRNPSSAGSWNSGSSGPGSTGNRNPGSSGTGGTATWKPGSSGPGSTGSWNSGSSGTGSTGNQNPGSPRPGSTGTWNPGSSERGSAGHWTSESSVSGSTGQWHSESGSFRPDSPGSGNARPNNPDWGTFEEVSGNVSPGTRREYHTEKLVTSKGDKELRTGKEKVTSGSTTTTRRSCSKTVTKTVIGPDGHKEVTKEVVTSEDGSDCPEAMDLGTLSGIGTLDGFRHRHPDEAAFFDTASTGKTFPGFFSPMLGEFVSETESRGSESGIFTNTKESSSHHPGIAEFPSRGKSSSYSKQFTSSTSYNRGDSTFESKSYKMADEAGSEADHEGTHSTKRGHAKSRPVRGIHTS SEQ ID NO : 28 / Chaine β de fibrine GHRPLDKKREEAPSLRPAPPPISGGGYRARPAKAAATQKKVERKAPDAGGCLHADPDLGVLCPTGCQLQEALLQQERPIRNSVDELNNNVEAVSQTSSSSFQYMYLLKDLWQKRQKQVKDNENVVNEYSSELEKHQLYIDETVNSNIPTNLRVLRSILENLRSKIQKLESDVSAQMEYCRTPCTVSCNIPVVSGKECEEIIRKGGETSEMYLIQPDSSVKPYRVYCDMNTENGGWTVIQNRQDGSVDFGRKWDPYKQGFGNVATNTDGKNYCGLPGEYWLGNDKISQLTRMGPTELLIEMEDWKGDKVKAHYGGFTVQNEANKYQISVNKYRGTAGNALMDGASQLMGENRTMTIHNGMFFSTYDRDNDGWLTSDPRKQCSKEDGGGWWYNRCHAANPNGRYYWGGQYTWDMAKHGTDDGVVWMNWKGSWYSMRKMSMKIRPFFPQQ SEQ ID NO : 29 (Exemple de Qtag) LLQG SEQ ID NO : 30 Chaine α de fibrinogène MFSMRIVCLVLSVVGTAWTADSGEGDFLAEGGGVRGPRVVERHQSACKDSDWPFCSDEDWNYKCPSGCRMKGLIDEVNQDFTNRINKLKNSLFEYQKNNKDSHSLTTNIMEILRGDFSSANNRDNTYNRVSEDLRSRIEVLKRKVIEKVQHIQLLQKNVRAQLVDMKRLEVDIDIKIRSCRGSCSRALAREVDLKDYEDQQKQLEQVIAKDLLPSRDRQHLPLIKMKPVPDLVPGNFKSQLQKVPPEWKALTDMPQMRMELERPGGNEITRGGSTSYGTGSETESPRNPSSAGSWNSGSSGPGSTGNRNPGSSGTGGTATWKPGSSGPGSTGSWNSGSSGTGSTGNQNPGSPRPGSTGTWNPGSSERGSAGHWTSESSVSGSTGQWHSESGSFRPDSPGSGNARPNNPDWGTFEEVSGNVSPGTRREYHTEKLVTSKGDKELRTGKEKVTSGSTTTTRRSCSKTVTKTVIGPDGHKEVTKEVVTSEDGSDCPEAMDLGTLSGIGTLDGFRHRHPDEAAFFDTASTGKTFPGFFSPMLGEFVSETESRGSESGIFTNTKESSSHHPGIAEFPSRGKSSSYSKQFTSSTSYNRGDSTFESKSYKMADEAGSEADHEGTHSTKRGHAKSRPVRGIHTS SEQ ID NO : 31 Chaine β de fibrinogène MKRMVSWSFHKLKTMKHLLLLLLCVFLVKSQGVNDNEEGFFSARGHRPLDKKREEAPSLRPAPPPISGGGYRARPAKAAATQKKVERKAPDAGGCLHADPDLGVLCPTGCQLQEALLQQERPIRNSVDELNNNVEAVSQTSSSSFQYMYLLKDLWQKRQKQVKDNENVVNEYSSELEKHQLYIDETVNSNIPTNLRVLRSILENLRSKIQKLESDVSAQMEYCRTPCTVSCNIPVVSGKECEEIIRKGGETSEMYLIQPDSSVKPYRVYCDMNTENGGWTVIQNRQDGSVDFGRKWDPYKQGFGNVATNTDGKNYCGLPGEYWLGNDKISQLTRMGPTELLIEMEDWKGDKVKAHYGGFTVQNEANKYQISVNKYRGTAGNALMDGASQLMGENRTMTIHNGMFFSTYDRDNDGWLTSDPRKQCSKEDGGGWWYNRCHAANPNGRYYWGGQYTWDMAKHGTDDGVVWMNWKGSWYSMRKMSMKIRPFFPQQ Tableau récapitulatif des séquences de l’invention D’autres caractéristiques, détails et avantages de l’invention apparaîtront à la lecture des Figures annexées et des exemples qui illustrent l’invention et ne visent en aucun cas à la limiter. Dans les molécules hybrides exemplifiées, c’est l’extrémité Nterminale du fragment Fc qui est liée à un espaceur PEGn (sauf dans le cas indiqué Cter-PEG (voir la )), et c’est toujours l’extrémité Nterminale dudit peptide qui est lié au cycloctyne DBCO ou à un deuxième espaceur PEGn le cas échéant. De plus, dans les molécules hybrides exemplifiées, dans l’espaceur PEGn lié au fragment Fc, n représente plus particulièrement 3 ou 4, et dans l’espaceur PEGn lié au peptide, l’espaceur PEGn représente 3 ou 8, bien que toute autre valeur de n, notamment entre 1 et 10, puisse être utilisée. Brève description des Figures Fig. 1 [ représente le schéma d’un exemple de molécule hybride selon l’invention . Un espaceur (qui est optionnel) est représenté entre le fragment Fc d’anticorps et le peptide dérivé de fibrine ayant un résidu citrullyl (dénommé « peptide citrulliné »). Fig. 2 représente un lymphocyte B exprimant à sa surface des ACPA transmembranaires liés à une molécule hybride selon l’invention, ladite molécule hybride étant elle-même liée par le fragment Fc à une cellule NK . La cellule NK va ainsi pouvoir détruire le lymphocyte B par ADCC. Plus spécifiquement, cette figure montre une cellule B (ou lymphocyte B) qui exprime à sa surface un BCR de type ACPA et qui interagit spécifiquement avec le peptide citrulliné porté par la molécule hybride. L’engagement du fragment Fc porté par la même molécule hybride au FcγRIIIa (CD16a) exprimé à la surface d’une cellule NK va activer l’ADCC et induire la destruction spécifique du lymphocyte B ACPA-positif. (ACPA, Anti-Citrullinated Protein Autoantibodies; ADCC : Antibody-Dependent Cell Cytotoxicity; BCR, B-Cell Receptor ; FcγR, Fc-gamma Receptor; NK cell, Natural Killer cell). Fig. 3 représente un lymphocyte B exprimant à sa surface des ACPA transmembranaires liés à une molécule hybride selon l’invention, ladite molécule hybride étant elle-même liée par le fragment Fc à un macrophage . Le macrophage va ainsi pouvoir détruire le lymphocyte B par phagocytose. Plus spécifiquement, cette Figure montre des cellules B (ou lymphocytes B) qui expriment à leur surface un BCR de type ACPA et qui interagissent spécifiquement avec des peptides citrullinés portés par les molécules hybrides. L’engagement des fragments Fc portés par ces mêmes molécules hybrides à différents FcγRs exprimés à la surface d’un macrophage va activer l’ADP, c’est-à-dire la phagocytose, et induire la destruction spécifique des lymphocytes B ACPA-positifs. (ACPA, Anti-Citrullinated Protein Autoantibodies; ADP, Antibody-Dependent Phagocytosis; BCR, B-Cell Receptor; FcγR, Fc-gamma Receptor). Fig. 4 représente la réactivité de plusieurs molécules hybrides comprenant le peptide de SEQ ID NO : 19 (β60-74cit 60,72,74 ) vis-à-vis des ACPA . β60-74 représente le peptide de SEQ ID NO : 19. Fc-WT-β60-74 représente un fragment Fc de type sauvage (Wild Type) qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne DBCO qui est couplé à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (β60-74 cit60,72,74 ). Fc-LALA-β60-74 représente un fragment Fc comprenant les mutations L234A, L235A et P329G qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne DBCO qui est couplé à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19. Fc-SDH-β60-74 représente un fragment Fc comprenant les mutations S239D, H268F, S324T et I332E qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne DBCO couplé à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19. Fc-WT-PEG-β60-74 représente un fragment Fc de type sauvage qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne DBCO couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (β60-74 cit60,72,74 ). Fc-SDH-PEG-β60-74 représente un fragment Fc comprenant les mutations S239D, H268F, S324T et I332E qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne DBCO qui est couplé à un espaceur PEGn, lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (β60-74 cit60,72,74 ). Fc-SDH(Cter)-PEG-β60-74 correspond au Fc-SDH-PEG-β60-74, à la différence près que dans l’hybride Fc-SDH(Cter)-PEG-β60-74, le premier PEGn est fixé au niveau de l’extrémité Cterminale du fragment Fc, contrairement aux autres exemples dans laquelle le premier PEGn est fixé au niveau de l’extrémité Nterminale. n représente un nombre entre 1 et 10 lorsqu’un espaceur PEGn est utilisé, de préférence 1, 2, 3, 4 ou 8. Fig. 5 représente la réactivité d’une molécule hybride comprenant le peptide de SEQ ID NO : 18 (α621-635cit 621,627,630 ) vis-à-vis des ACPA . α621-635 représente le peptide de SEQ ID NO : 18. Fc-WT-PEG-α621-635 représente un fragment Fc de type sauvage (WT) qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne DBCO couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 18. Fc-SDH-PEG-α621-635 représente un fragment Fc comprenant les mutations S239D, H268F, S324T et I332E qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne DBCO qui est couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 18. n représente un nombre entre 1 et 10 lorsqu’un espaceur PEGn est utilisé, de préférence 1, 2, 3, 4 ou 8. Fig. 6 représente la réactivité d’un ACPA monoclonal humain recombinant (clone 2H06), comprenant un Fc non modifié ou modifié avec les mutations de type SDH, vis-à-vis des molécules hybrides comprenant le peptide de SEQ ID NO : 18 . FcWT-PEG-α621-635 représente un fragment Fc de type sauvage qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne DBCO couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 18. FcSDH-PEG-α621-635 représente un fragment Fc comprenant les mutations S239D, H268F, S324T et I332E, qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne DBCO couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 18. n représente un nombre entre 1 et 10 lorsqu’un espaceur PEGn est utilisé, de préférence 1, 2, 3, 4 ou 8. Fig. 7 représente un procédé de fabrication d’une molécule hybride selon l’invention, comprenant le schéma de dérivation et de conjugaison des fragments Fc. Fig. 8 représente l’évolution du pourcentage de phagocytose et de lymphocytes B en présence de molécules hybrides Fc-WT-PEG-α621-635arg et Fc-WT-PEG-α621-635cit. Les résultats des 6 expériences présentés en Exemple 6 sont indiqués (N=6). La valeur P est comme suit : * Fig. 9 représente la lyse par des cellules NK humaines, de cellules d’une lignée cellulaire B humaine maligne plasmoblastique transduite exprimant à sa membrane un ACPA monoclonal recombinant, en présence des hybrides FcWT-N3-DBCO-PEG3-α621-635Cit et FcSDH-N3-DBCO-PEG3-α621-635Cit. Nalm6 représente le cas où seules les cellules Nalm6 ont été incubées ; Nalm6+NK le cas où les cellules Nalm6 ont été incubées avec les cellules NK ; WTαCIT le cas où l’hybride WTαCIT a été incubé avec les cellules Nalm6 et les cellules NK ; WTαArg le cas où l’hybride WTαArg a été incubé avec les cellules Nalm6 et les cellules NK ; SDHαCIT le cas où l’hybride SDHαCIT a été incubé avec les cellules Nalm6 et les cellules NK et SDHαArg le cas où l’hybride SDHαArg a été incubé avec les cellules Nalm6 et les cellules NK. Exemples Exemple 1 : Exemple de production d’une molécule hybride selon l’invention, et d’une cellule immunitaire greffée avec une telle molécule hybride La molécule hybride ici décrite comprend la construction suivante : un fragment Fc lié de façon covalente à un PEGn, lui-même couplé à un azoture, ledit azoture étant lié de façon covalente à un alcyne, qui est lui-même lié à un espaceur couplé à un peptide citrulliné. Une telle molécule peut se lire : Fc-PEGn-N 3 -DBCO-PEGn-peptide citrulliné. Les deux PEGn peuvent être identiques ou bien différents (par exemple le premier PEGn est PEG 3 et le deuxième PEGn est PEG 2 ). 1. Synthèse d’un NH2-PEGn-N 3 (i.e. un espaceur couplé à un azoture à une extrémité et possédant une fonction amine libre à une autre extrémité). 2. Mise en présence du NH 2 -PEGn-N 3 , avec un fragment Fc possédant un Qtag, et une transglutaminase, de préférence pendant 16h à 37°C. Cette étape dite « de dérivation » est de préférence réalisée avec 20 fois plus de moles de NH 2 -PEGn-N 3 que de moles de fragment Fc. La transglutaminase est utilisée, à hauteur de 15U/µmol par Qtag présent. Eventuellement un dessalage peut être réalisé pour retirer l’excédent d’espaceur non lié au fragment Fc à l’issue de l’étape. Un Fc-PEGn-N 3 est ainsi obtenu. Si le fragment Fc comporte 2Qtag (un porté sur chaque monomère), alors le fragment Fc peut porter deux PEGn-N 3 . 3. Synthèse d’un Cys-PEGn-peptide citrulliné (i.e. un espaceur couplé à un peptide à une extrémité et possédant une cystéine libre à une autre extrémité). Le DBCO est ensuite couplé au Cys-PEGn-peptide citrulliné au niveau de la cystéine, et un DBCO-PEGn-peptide citrulliné est ainsi obtenu. 4. Réalisation du « click » : couplage entre le N 3 et le DBCO. Le DBCO-PEGn-peptide citrulliné est mis en présence Fc-PEGn-N 3 avec, de préférence 10 fois plus de moles de DBCO-PEGn-peptide citrulliné que de moles de Fc-PEGn-N 3 . La réaction du click se déroule à température ambiante, et est presque complète au bout de 4h. 5. Obtention de la molécule hybride : Fc-PEGn-N 3 -DBCO-PEGn-peptide citrulliné. Ce mode de réalisation est illustré en . 6. Une cellule immunitaire greffée avec une telle molécule hybride est ensuite obtenue en mettant en contact une cellule immunitaire exprimant au moins un récepteur Fc en surface et une molécule hybride. Grâce à la liaison récepteur Fc/fragment Fc, la molécule hybride et la cellule immunitaire sont greffées. De façon similaire un Fc-PEGn-DBCO et un N 3 -PEGn-peptide citrulliné peuvent être obtenus, puis couplés pour obtenir Fc-PEGn-DBCO-N 3 -PEGn-peptide citrulliné. De façon similaire un Fc-PEGn-DBCO et un N 3 -peptide citrulliné peuvent être obtenus, ou un Fc-PEGn-N 3 et un DBCO-peptide citrulliné, puis couplés pour obtenir respectivement Fc-PEGn-DBCO-N 3 -peptide citrulliné ou Fc-PEGn-N 3 -DBCO-peptide citrulliné. Exemple 2 : Réactivité d’ACPAs purifiés par chromatographie d’affinité sur peptides citrullinés et élués à pH3 (fraction pH3), vis-à-vis des molécules hybrides selon l’invention Les ACPA (ici ACPA, fraction pH3) utilisés sont des ACPA obtenus à partir de sérum de patients atteints de polyarthrite rhumatoïde ACPA-positifs. De tels ACPA ont été obtenus par une méthode classique de chromatographie d’affinité sur colonne connue de l’homme de l’art, utilisant comme antigènes liés un ou plusieurs des cinq peptides immunodominants de l’invention (cf SEQ ID NO : 5, SEQ ID NO : 6, SEQ ID NO : 14, SEQ ID NO : 18 ou SEQ ID N O : 19). a. Exemples avec des molécules hybrides contenant le peptide β60-74cit Des puits de plaque de microtitration ELISA ont été revêtus par adsorption passive à l’aide de 100 µL d’une solution contenant soit le peptide β60-74cit (SEQ ID NO : 19, également dénommé β60-74), soit une molécule hybride Fc-WT-β60-74cit, Fc-LALA-β60-74cit, Fc-SDH-β60-74cit, Fc-WT-PEG-β60-74cit, Fc-SDH-PEG-β60-74cit ou Fc-SDH(Cter)-PEG-β60-74cit. Ces solutions ont été utilisées chacune à la concentration de 5 µg/mL en tampon PBS (Phosphate Buffered Saline) et incubées pendant une nuit à 4°C. Le peptide non citrulliné et les molécules hybrides construites avec le peptide non citrulliné (β60-74arg, correspondant à un peptide de SEQ ID NO : 19 dans lequel les résidus citrullyl ont été remplacés par des résidus arginyl) ont été utilisés à la même concentration comme contrôles négatifs. Les puits ont ensuite été saturés par la BSA (Bovine Serum Albumin) à 2%, pendant 1h à 4°C. Après lavages, les ACPA purifiés ont été incubés à 1, 0,5 ou 0,25 µg/mL, dilués en tampon PBS 2% BSA 2M NaCl pendant 1h à 4°C. Après lavages, la réactivité des ACPA a été détectée à l’aide d’un anticorps secondaire anti-Fab d’IgG humaines dilué au 1/2500 en tampon PBS 2% BSA. Les résultats sont exprimés en ΔDO (Delta-Densité Optique), correspondant à la DO obtenue avec le peptide β60-74cit ou avec les molécules hybrides construites avec le peptide β60-74cit, soustraite respectivement de la DO obtenue avec le peptide β60-74arg ou avec les molécules hybrides correspondantes construites avec le peptide β60-74arg. Les résultats sont présentés en . Ils montrent une réactivité dose-dépendante des ACPA purifiés sur peptide β60-74cit, vis-à-vis des molécules hybrides Fc-WT-β60-74cit, Fc-LALA-β60-74cit, Fc-SDH-β60-74cit, Fc-WT-PEG-β60-74cit, Fc-SDH-PEG-β60-74cit ou Fc-SDH(Cter)-PEG-β60-74cit. Ils montrent qu’inclus dans les différents hybrides, les peptides citrullinés restent parfaitement réactifs avec les ACPA. b. Exemples avec des molécules hybrides contenant le peptide α621-635cit Des puits de plaque ELISA ont été revêtus à l’aide de 100 µL d’une solution contenant le peptide α621-635cit (SEQ ID NO : 18, également dénommé α621-635) ou une molécule hybride Fc-WT-PEG-α621-635cit ou encore Fc-SDH-PEG-α621-635cit, à la concentration de 5 µg/mL en tampon PBS (Phosphate Buffered Saline), incubée pendant une nuit à 4°C. Le peptide non citrulliné α621-635arg et les molécules hybrides correspondantes construites avec le peptide non citrulliné (α621-635arg, correspondant à un peptide de SEQ ID NO : 18 dans lequel les résidus citrullyl ont été remplacés par des résidus arginyl) ont été utilisés à la même concentration comme contrôles négatifs. Une saturation des puits a ensuite été réalisée par la BSA (Bovine Serum Albumin) à 2% en tampon PBS pendant 1h à 4°C. Après lavages, les ACPA purifiés ont été incubés à 4, 2 et 1 µg/mL dilués en tampon PBS 2% BSA 2M NaCl pendant 1h à 4°C. Après lavages, la réactivité des ACPA a été détectée à l’aide d’un anticorps secondaire anti-Fab d’IgG humaines dilué au 1/2500 en tampon PBS 2% BSA. Les résultats sont exprimés en ΔDO (Delta-Densité Optique), correspondant à la DO obtenue avec le peptide α621-635cit ou avec les molécules hybrides construites avec le peptide α621-635cit, soustraite respectivement de la DO obtenue avec le peptide α621-635arg ou avec les molécules hybrides construites avec le peptide α621-635arg. Les résultats sont présentés en . Ils montrent une forte réactivité dose-dépendante des ACPA purifiés sur peptide α621-635cit vis-à-vis des molécules hybrides Fc-WT-PEG-α621-635cit et Fc-SDH-PEG-α621-635cit. La réactivité des ACPA vis-à-vis des molécules hybrides est comparativement plus forte alors que la densité épitopique qu’elles présentent est inférieure à celle du peptide α621-635cit. Exemple 3 : Réactivité des ACPA monoclonaux recombinants 2H06 sous forme sauvage (wild type - WT) ou mutée sur leur fragment Fc (mutation SDH), vis-à-vis des molécules hybrides selon l’invention L’ACPA ici utilisé est un ACPA humain monoclonal recombinant ((clone 022014CCP14CFCT2H06, dit 2H06). Un tel ACPA peut être obtenu comme décrit dans Titcombe P. J., Wigerblad G., Sippl N., Zhang N., Shmagel A. K., Sahlström P., Zhang Y., Barsness L. O., Ghodke‐Puranik Y., Baharpoor A., et al. Pathogenic Citrulline-Multispecific B Cell Receptor Clades in Rheumatoid Arthritis. Arthritis & Rheumatology 2018, 70 (12), 1933–1945. https://doi.org/10.1002/art.40590. Le VH de l’ACPA 2H06 a le numéro d’accession MH629710.1 sous Genbank, et le VL a le numéro d’accession MH629700.1. Des puits de plaque ELISA ont été revêtus à l’aide de 100 µL d’une solution contenant soit la molécule hybride Fc-WT-PEG-α621-635cit, soit Fc-SDH-PEG-α621-635cit, utilisée à la concentration de 5 µg/mL en tampon PBS (Phosphate Buffered Saline) incubées pendant une nuit à 4°C. Les molécules hybrides construites avec un peptide non citrulliné (α621-635arg) ont été utilisées à la même concentration comme contrôles négatifs. Une saturation des puits a ensuite été réalisée en tampon PBS 2% BSA (Bovine Serum Albumin), pendant 1h à 4°C. Après lavages, les ACPA monoclonaux recombinants 2H06, WT et SDH, ont été incubés à 40, 20 et 10 µg/mL, dilués en tampon PBS 2% BSA 2M NaCl pendant 1h à 4°C. Après lavages, leurs réactivités ont été détectées à l’aide d’un anticorps secondaire anti-Fab d’IgG humaines dilué au 1/2500 en tampon PBS 2% BSA. Les résultats sont exprimés en ΔDO (Delta-Densité Optique), correspondant à la DO obtenue avec les molécules hybrides construites avec le peptide α621-635cit soustraite de la DO obtenue avec les molécules hybrides construites avec le peptide contrôle négatif α621-635arg. Les molécules hybrides Fc-WT-PEG-α621-635cit et Fc-SDH-PEG-α621-635cit sont identiques à celles utilisées dans l’Exemple 2. Les résultats sont présentés en . Les résultats montrent une forte réactivité dose-dépendante, des ACPA monoclonaux WT et SDH vis-à-vis des molécules hybrides Fc-WT-PEG-α621-635cit et Fc-SDH-PEG-α621-635cit. Exemple 4 : Fixation des molécules hybrides sur macrophages à 2h et 20h, à température physiologique Des macrophages humains, différenciés in vitro en présence de M-CSF (100ng/mL) à partir de monocytes CD14+ isolés du sang périphérique d’un sujet sain ont été incubés à 500.000 cellules/puits, en présence de molécules hybrides à 5 µg/mL, FcWT-N3-DBCO-β60-74Cit (un fragment Fc de type sauvage qui est lié à un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne DBCO qui est couplé à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19, dénommé WT dans les Tableaux 2 et 3), FcSDHFSTIE-N3-DBCO-β60-74Cit (un fragment Fc comprenant les mutations S239D, H268F, S324T et I332E qui est lié à un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un DBCO qui est couplé à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19, dénommé SDH dans les Tableaux 2 et 3) ou FcLALAPG-N3-DBCO-β60-74Cit (un fragment Fc comprenant les mutations L234A, L235A et P329G qui est lié à un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne DBCO qui est couplé à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19, dénommé LALAPG dans les Tableaux 2 et 3), pendant 2h ou 20h à 37°C. La fixation des molécules hybrides à la surface des macrophages est mise en évidence et quantifiée par cytofluorimétrie (FACS Canto II) après incubation des macrophages avec un anticorps anti-Fc couplé au FITC, utilisé 1/1000. Dans les constructions, n représente un nombre entre 1 et 10 lorsqu’un espaceur PEGn est utilisé, de préférence 1, 2, 3, 4 ou 8. Les résultats sont présentés dans les Tableaux 2 et 3 ci-après. « NM » et « ANTI FC » représentent respectivement le puits contenant les macrophages incubés sans anticorps ou avec l’anticorps anti-Fc seul. 2h Macrophages Ratio NM 177 / ANTI FC 285 / WT 808 2.8 LALAPG 502 1.8 SDH 1330 4.7 Résultats à 2h 20h Macrophages Ratio NM 213 / ANTI FC 275 / WT 1003 3.6 LALAPG 404 1.5 SDH 1457 5.3 Résultats à 20h Les résultats présentés dans les Tableaux 2 et 3, montrent que les molécules hybrides FcWT-N3-DBCO-β60-74Cit et FcSDHFSTIE-N3-DBCO-β60-74Cit à la température physiologique de 37°C, se fixent dès la 2 ème heure à la membrane des macrophages et y sont encore présentes 20h plus tard. Ces résultats montrent également que la fixation de l’hybride FcSDHFSTIE-N3-DBCO-β60-74Cit est supérieure à celle de la forme sauvage FcWT-N3-DBCO-β60-74Cit. Exemple 5 : Phagocytose induite par l’hybride Fc-SDH peptide β60citrulliné lorsqu’on arme les lymphocytes B via leurs FcγRIIb (CD32b) avec les ACPA purifiés . Des lymphocytes B humains fraîchement purifiés à partir de sang périphérique de donneurs sains par tri magnétique CD19+, ont été marqués au PKH-67 vert (Paul Karl Horan / marqueur lipidique fluorescent) puis incubés avec des ACPA purifiés (fraction pH3, obtenus comme dans l’Exemple 2) sur peptide β60-74cit (SEQ ID NO : 19) à une concentration de 5 μg/mL durant 30min à 37°C. Par la suite, les cellules ont été lavées puis mises en présence de l’hybride FcSDHFSTIE-N3-DBCO-PEG3-β60-74Cit (un fragment Fc comprenant les mutations S239D, H268F, S324T et I332E qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne DBCO qui est couplé à un espaceur PEGn lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19). Cette construction est dénommée CIT dans le Tableau 4 ci-après). Les cellules ont également été mises en présence de l’hybride FcSDHFSTIE-N3-DBCO-PEG-β60-74Arg (qui correspond à la construction FcSDHFSTIE-N3-DBCO-PEG3-β60-74Cit dans laquelle le peptide β60-74 n’est pas citrulliné). Cette construction est dénommée NCIT dans le Tableau 4 ci-après). Les cellules ont été mises en présence des hybrides à 10 μg/mL durant 30 min à 37°C. Après lavage, les cellules ont été mises au contact des macrophages (marqués PKH-26 rouge), à raison de 1 lymphocyte B pour 1 macrophage, durant 2h à 37°C. Les cellules ont ensuite été décollées puis analysées par cytométrie en flux. Les cellules présentant la double fluorescence (PKH-67 vert/PKH-26 rouge) correspondent aux macrophages qui ont phagocyté des lymphocytes. Les différentes populations cellulaires sont exprimées en pourcentage de la population cellulaire totale : pourcentage de phagocytose et pourcentage de lymphocytes B. Dans les constructions, n représente un nombre entre 1 et 10 lorsqu’un espaceur PEGn est utilisé, de préférence 1, 2, 3, 4 ou 8. Les résultats sont présentés dans le Tableau 4 selon quatre lignes qui correspondent à quatre expériences indépendantes, % Phagocytose % Population B NCIT CIT % (ΔCIT-NCIT) NCIT CIT % (ΔCIT-NCIT) 9.28 17.8 +91% 46.1 32.9 - 40% 16.2 20.4 +26% 40.5 30.5 - 33% 3.42 5 +46% 77.1 66.7 - 16% 6.28 8.95 +42% 77.3 69.3 - 12% Pourcentage de phagocytose et pourcentage de lymphocytes B Les résultats obtenus confirment que l’activité de phagocytose est majorée en présence des hybrides citrullinés (augmentation de la phagocytose associée à une diminution de la population de lymphocytes B). En effet, dans les 4 expériences indépendantes, une augmentation significative du pourcentage de phagocytose, toujours associée à une diminution significative de la population de lymphocytes B, a été observée lorsque les lymphocytes B étaient recouverts de l’hybride FcSDHFSTIE-N3-DBCO-PEG3-β60-74Cit (CIT) versus FcSDHFSTIE-N3-DBCO-PEG3-β60-74Arg (NCIT). Exemple 6 : Phagocytose de lymphocytes B chargés avec l’ACPA humain monoclonal recombinant 2H06 muté SDH, par des macrophages armés avec l’hybride Fc-WT-PEG-α621-635cit. Des lymphocytes B humains fraîchement purifiés à partir de sang périphérique de donneurs sains par tri magnétique CD19+, ont été marqués au PKH-67 vert (Paul Karl Horan / marqueur lipidique fluorescent) puis incubés durant 1h à 37°C avec l’ACPA monoclonal humain recombinant 2H06 dont le Fc est muté SDH, à une concentration de 10 μg/mL. De tels anticorps peuvent être obtenus comme dans l’Exemple 3. En parallèle, des macrophages marqués au PKH-26 rouge ont été mis en présence des hybrides Fc-WT-PEG-α621-635cit (un fragment Fc de type sauvage qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un DBCO qui est couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même lié au peptide représenté par SEQ ID NO : 18) et Fc-WT-PEG-α621-635arg (il s’agit de l’hybride Fc-WT-PEG-α621-635cit, à la différence près que le peptide n’est pas citrulliné), à 5 μg/mL durant 1 h à 37°C. Après lavage, les cellules ont été mises en contact, à raison de 1 lymphocyte B pour 1 macrophage, durant 2h à 37°C. Les cellules ont ensuite été décollées puis analysées par cytométrie en flux. Le pourcentage de phagocytose correspond au pourcentage de cellules marquées par les 2 fluorochromes (PKH-67 vert/PKH-26 rouge). Dans les constructions, n représente un nombre entre 1 et 10 lorsqu’un espaceur PEGn est utilisé, de préférence 1, 2, 3, 4 ou 8. Les résultats sont présentés dans le Tableau 5 selon six lignes qui correspondent à cinq expériences indépendantes. NCIT représente le résultat avec le peptide Fc-WT-PEG-α621-635arg, CIT représente le résultat avec le peptide Fc-WT-PEG-α621-635cit, et (ΔCIT-NCIT) représente la différence entre la DO obtenue en présence de Fc-WT-PEG-α621-635cit et la DO obtenue en présence de Fc-WT-PEG-α621-635arg, divisée par la DO obtenue en présence de Fc-WT-PEG-α621-635arg. % Phagocytose NCIT CIT % (ΔCIT-NCIT) 4.3 7.0 +63% 15.8 19.2 +21% 4.6 7.3 +58% 12.8 18.2 +42% 16.9 21.4 + 27% 15,7 20.1 + 28% % Population B NCIT CIT % (ΔCIT-NCIT) 66.6 61.2 - 8% 78.7 76.6 - 3% 67.6 57.2 - 15% 54.2 47.7 - 12% 44.5 37 - 17% 43.8 38.5 - 12% Pourcentage de phagocytose et pourcentage de lymphocytes B Les résultats montrent que l’activité de phagocytose est majorée en présence des hybrides citrullinés : augmentation de la phagocytose (de 21 à 63%), associée à une diminution de la population de lymphocytes B (de 3 à 17%). Dans chacune des six expériences, le % de doubles-positifs est plus élevé, donc la phagocytose est majorée et la population B diminue lorsque les macrophages sont armés avec les hybrides Fc-WT-PEG-α621-635cit (CIT) versus Fc-WT-PEG-α621-635arg (NCIT). Les résultats sont également présentés en Figure 8A et 8B. Exemple 7 : Stabilité de la fixation des Fc-SDH A488 et des hybrides Fc-SDH peptide β60 citrulliné, sur des cellules NK après 30min, 24h et 48h, à température physiologique Les cellules NK ont été incubées 30min, 24h ou 48h à 37°C en présence de FcSDHFSTIE-N3-DBCO-A488 (un fragment Fc comprenant les mutations S239D, H268F, S324T et I332E qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un DBCO, la molécule étant marquée avec le fluorochrome A488) ou de FcSDHFSTIE-N3-DBCO-PEG3-β60-74cit-lysineA488 (un fragment Fc comprenant les mutations S239D, H268F, S324T et I332E qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un DBCO qui est couplé à espaceur PEGn lié à un peptide de SEQ ID NO : 19, la molécule étant marquée avec le fluorochrome A488 qui est liée à la molécule via une lysine). La fixation de ces 2 sondes fluorescentes aux cellules NK a été analysée par cytofluorimétrie. Dans les constructions, n représente un nombre entre 1 et 10 lorsqu’un espaceur PEGn est utilisé, de préférence 1, 2, 3, 4 ou 8. Les résultats sont présentés dans les Tableaux 6 (30 minutes), 7 (24 heures) et 8 (48 heures) suivants. NM représente les cellules NK non marquées, sans anticorps. MFI RATIO NM 562 / FcSDHFSTIE-N3-DBCO-PEG3-β60-74cit-lysineA488 4588 8,163 FcSDHFSTIE-N3-DBCO-A488 2973 5,289 Résultats à 30 minutes MFI RATIO NM 558 / FcSDHFSTIE-N3-DBCO-PEG3-β60-74cit-lysineA488 4091 7,324 FcSDHFSTIE-N3-DBCO-A488 2353 4,212 Résultats à 24 heures MFI RATIO NM 494 / FcSDHFSTIE-N3-DBCO-PEG3-β60-74cit-lysineA488 4336 8,77 FcSDHFSTIE-N3-DBCO-A488 1710 3,460 Résultats à 48 heures Les résultats présentés dans les Tableaux 6 à 8, montrent que le FcSDHFSTIE-N3-DBCO-A488 et le FcSDHFSTIE-N3-DBCO-PEG3-β60-74cit-lysine A488 restent fixés à la membrane des cellules NK au moins jusqu’à 48h à température physiologique et que la fixation du peptide sur le fragment Fc n’empêche pas son interaction avec les Fc gamma récepteurs des cellules NK. Exemple 8 : Fixation sur cellules NK du fragment Fc-SDH marqué par le fluorochrome A647 comparée à la fixation des mêmes hybrides en présence d’IgG humaines à des concentrations croissantes, jusqu’à la concentration sérique physiologique. Les cellules NK ont été incubées 30min à 37°C soit en présence du fragment FcSDHFSTIE-N3-DBCO-A647 (un fragment Fc comprenant les mutations S239D, H268F, S324T et I332E qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un DBCO, la molécule étant marquée avec le fluorochrome A647) à 10 µg/mL, soit en présence de ce même fragment FcSDHFSTIE-N3-DBCO-A647 à 10 µg/mL, co-incubé avec des IgG humaines à concentrations croissantes (1, 10, 100, 1.000, 10.000 µg/mL). Dans les constructions, n représente un nombre entre 1 et 10 lorsqu’un espaceur PEGn est utilisé, de préférence 1, 2, 3, 4 ou 8. La fixation du fragment FcSDHFSTIE-N3-DBCO-A647 (dit SDH) aux cellules NK a été analysée par cytofluorométrie. Les résultats sont présentés dans le Tableau 9. MFI RATIO NEG 212.08 / SDH 10 µg/mL 38545.45 181.74 SDH (1µg/mL IgG) 37899.98 178.70 SDH (10µg/mL IgG) 38771.43 182.81 SDH (100µg/mL IgG) 36270.21 171.02 SDH (1000µg/mL IgG) 29526.19 139.22 SDH (10000µg/mL IgG) 20486.26 96.59 Résultats Les résultats montrent, une diminution dose-dépendante de la fixation du FcSDHFSTIE-N3-DBCO-A647 aux cellules NK à partir de 100 µg/mL d’IgG mais celle-ci reste effective et élevée, même en présence d’une concentration en IgG 1.000 fois supérieure à celle du fragment Fc (10.000 µg/mL) qui correspond à la concentration sérique physiologique des IgG chez l’Homme. Exemple 9 : Lyse par des cellules NK humaines, de cellules d’une lignée B humaine maligne plasmoblastique transduite exprimant à sa membrane un ACPA monoclonal recombinant, en présence des hybrides FcWT-N3-DBCO-PEG3-α621-635Cit et FcSDH-N3-DBCO-PEG3-α621-635Cit. WTαCIT représente l’hybride comprenant un fragment Fc de type sauvage qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne DBCO qui est couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même lié au peptide représenté par SEQ ID NO : 18 ; WTαArg correspond à l’hybride WTαCIT à la différence près que le peptide de SEQ ID NO : 18 n’est pas citrulliné ; SDHαCIT représente un fragment Fc comprenant les mutations S239D, H268F, S324T et I332E qui est lié à au moins un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne DBCO qui est couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même lié au peptide représenté par SEQ ID NO : 18 ; et SDHαArg correspond à l’hybride SDHαCIT à la différence près que le peptide de SEQ ID NO : 18 n’est pas citrulliné. Dans les constructions, n représente un nombre entre 1 et 10 lorsqu’un espaceur PEGn est utilisé, de préférence 1, 2, 3, 4 ou 8. L’expérience a été réalisée en plaques de 96 puits à fond rond. Des cellules de la lignée Nalm6 (transduite pour l’expression membranaire de l’ACPA monoclonal humain recombinant 2H06) ont été utilisées comme cellules-cibles. 100.000 cellules/puits ont été incubées en présence, d’une part, des molécules hybrides WTαCit ou SDHαCit utilisées à 15µg/mL et, d’autre part, des cellules NK fraichement purifiées (marquées avec le cell tracker violet) utilisées comme cellules effectrices, également à 100.000 cellules/puits, durant 17h à 37°C. Les molécules hybrides WTαArg et SDHαArg, utilisées comme contrôles de spécificité, ont été incubées dans les mêmes conditions. Comme contrôles négatifs, les cellules Nalm6 ont été incubées en l’absence d’hybrides, seules ou en présence de cellules NK. La lyse cellulaire a été mesurée en cytométrie de flux par un marquage avec la sonde fluorescente 7-AAD. Les résultats montrent le pourcentage de cellules positives pour ce marqueur (% de cellules mortes). (%) (ΔCIT-Arg) représente la différence entre les pourcentages de cellules mortes 7-AAD-positives en présence des hybrides porteurs de peptides citrullinés WT et SDH versus leurs homologues non-citrullinés, divisée par le pourcentage de cellules 7-AAD-positives en présence de l’hybride non citrulliné correspondant. Les résultats sont présentés en et dans le Tableau 10. % 7-AAD + % (ΔCIT-Arg) Nalm6 8 Nalm6 + NK 45 Nalm6 + NK + WT αCIT 65 + 62 % Nalm6 + NK + WT αArg 40 Nalm6 + NK + SDH αCIT 55 + 83 % Nalm6 + NK + SDH αArg 30 Résultats Les résultats montrent que les hybrides citrullinés (WT et SDH) sont capables de majorer spécifiquement la lyse par ADCC des cellules-cibles Nalm6 ACPA-positives provoquée par les cellules NK. Cette augmentation de mortalité est de 62 % pour les hybrides WT et de 83 %, pour les hybrides SDH. Exemple 10 : La fixation des hybrides Fc (WT, SDH, LALAPG)-peptide β60 Cit sur les cellules NK n’induit pas leur dégranulation Les hybrides ici utilisés sont les suivants : FcWT-β60-74 représente un fragment Fc de type sauvage qui est lié à un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (β60-74cit 60,72,74 ). FcSDH-β60-74 représente un fragment Fc comprenant les mutations S239D, H268F, S324T et I332E qui est lié à un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même lié à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (β60-74cit 60,72,74 ). FcLALAPG-β60-74 représente un fragment Fc comprenant les mutations L234A, L235A et P329G qui est lié à un espaceur PEGn qui est lui-même couplé à un azoture lié de façon covalente à un cyclooctyne couplé à un espaceur PEGn qui est lui-même à un peptide représenté par SEQ ID NO : 19 (β60-74cit 60,72,74 ). Dans les constructions, n représente un nombre entre 1 et 10 lorsqu’un espaceur PEGn est utilisé, de préférence 1, 2, 3, 4 ou 8. Les cellules NK ont été incubées 30 min à 37°C en présence des molécules hybrides Fc-WT-β60-74cit, Fc-SDH-β60-74cit, Fc-LALAPG-β60-74cit à 10 µg/mL. Après lavage, les cellules ont été incubées 30 min à 4°C en présence d’un anticorps fluorescent anti-CD107a (marqueur de dégranulation). Après lavage, l’analyse de l’expression membranaire de CD107a a été réalisée en cytométrie de flux. Les résultats sont présentés dans le Tableau 11. Cellules NK Seules Revêtues du FcWT-β60-74 Revêtues du FcSDH-β60-74 Revêtues du FcLALAPG-β60-74 % d’expression du CD107a 2,5% 1,8% 3% 2,2% Résultats Les résultats présentés dans le Tableau 11 montrent que l’expression membranaire du marqueur de dégranulation CD107a est équivalente (entre 1,8 et 3%), que la cellule NK soit revêtues ou non des molécules hybrides selon l’invention. La fixation des molécules hybrides n’induit donc pas la dégranulation des cellules NK. Cellule immunitaire comprenant au moins un récepteur Fc à sa surface, caractérisée en ce qu’une molécule hybride est greffée au niveau du récepteur Fc, ladite molécule hybride comprenant au moins un fragment Fc d’anticorps lié de façon covalente à un peptide dérivé de fibrine ayant au moins un résidu citrullyl, un espaceur étant optionnellement présent entre ledit fragment Fc et ledit peptide citrulliné. Cellule immunitaire selon la revendication 1, ladite cellule étant choisie parmi une cellule NK ou un macrophage. Cellule immunitaire selon l’une quelconque des revendications précédentes, dans laquelle le récepteur Fc est un récepteur Fc gamma, notamment FcγRIII. Cellule immunitaire selon l’une quelconque des revendications précédentes, dans laquelle ledit peptide de la molécule hybride est dérivé de tout ou partie de la séquence de la chaine α ou β d’une fibrine de vertébré, par substitution d’au moins un résidu arginyl par un résidu citrullyl, ladite fibrine de vertébré étant de préférence une fibrine de mammifère, plus particulièrement humaine. Cellule immunitaire selon l’une quelconque des revendications précédentes, dans laquelle ledit espaceur de la molécule hybride est un polymère contenant un ou plusieurs motifs de répétition contenant le groupe éther, ledit espaceur étant de préférence le polyéthylène glycol de formule PEGn, dans laquelle n représente un nombre entier compris entre 1 et 100, préférentiellement entre 1 et 10 et notamment 1, 2, 3, 4 ou 8. Cellule immunitaire selon l’une quelconque des revendications précédentes, dans laquelle ledit peptide de la molécule hybride comprend au moins un résidu citrullyl, et est choisi dans le groupe constitué par : a) un peptide défini par la séquence X 1 PAPPPISGGGYX 2 AX 3 (SEQ ID NO : 1) dans laquelle X 1 , X 2 , et X 3 représentent chacun un résidu citrullyl ou un résidu arginyl, et au moins l'un des résidus X 1 ou X 2 ou X 3 est un résidu citrullyl ; b) un peptide défini par la séquence GPX 1 VVEX 2 HQSACKDS (SEQ ID NO : 2) dans laquelle X 1 et X 2 représentent chacun un résidu citrullyl ou un résidu arginyl, et au moins l'un des résidus X 1 ou X 2 est un résidu citrullyl ; c) un peptide défini par la séquence SGIGTLDGFX 1 HX 2 HPD (SEQ ID NO : 3) dans laquelle X 1 et X 2 représentent chacun un résidu citrullyl ou un résidu arginyl, et au moins l'un des résidus X 1 ou X 2 est un résidu citrullyl ; d) un peptide défini par la séquence VDIDIKIX 1 SCX 2 GSCS (SEQ ID NO : 4) dans laquelle X 1 et X 2 représentent chacun un résidu citrullyl ou un résidu arginyl, et au moins l'un des résidus X 1 ou X 2 est un résidu citrullyl ; e) un peptide défini par la séquence X 1 GHAKSX 2 PVX 3 GIHTS (SEQ ID NO : 12) dans laquelle X 1 , X 2 et X 3 représentent chacun un résidu citrullyl ou un résidu arginyl, et au moins l'un des résidus X 1 ou X 2 ou X 3 est un résidu citrullyl ; f) un peptide comprenant au moins 5 acides aminés consécutifs, dont au moins un résidu citrullyl, de l'un des peptides a) à e) ci-dessus. Cellule immunitaire selon l’une quelconque des revendications 1-5, dans laquelle ledit peptide de la molécule hybride est choisi dans le groupe constitué par : SEQ ID NO : 5, SEQ ID NO : 6, SEQ ID NO : 7 , SEQ ID NO : 8, SEQ ID NO : 9, SEQ ID NO : 10, SEQ ID NO : 11 , SEQ ID NO : 13, SEQ ID NO : 14, SEQ ID NO : 15, SEQ ID NO : 16, SEQ ID NO : 17, SEQ ID NO : 18, SEQ ID NO : 19, SEQ ID NO : 20, SEQ ID NO : 21, SEQ ID NO : 22 et SEQ ID NO : 23, plus particulièrement choisi dans le groupe constitué par : SEQ ID NO : 5, SEQ ID NO : 6, SEQ ID NO : 14, SEQ ID NO : 18 et SEQ ID NO : 19. Cellule immunitaire selon l’une quelconque des revendications précédentes, dans laquelle ledit fragment Fc de la molécule hybride est un fragment Fc humain, notamment d’IgG, plus particulièrement d’IgG1. Cellule immunitaire selon l’une quelconque des revendications précédentes, dans laquelle ledit fragment Fc de la molécule hybride est de type sauvage ou muté, ledit fragment Fc muté comprenant de préférence au moins les mutations suivantes : - L234A et L235A, ou - L234A, L235A et P329G, ou - G236A, S239D et I332E, ou - G236A, S239D, A330L et I332E, ou - S239D, H268F, S324T et I332E, la numérotation étant indiquée dans la séquence d’une IgG1 humaine selon l’index EU. Cellule immunitaire selon l’une quelconque des revendications précédentes, dans laquelle dans ladite molécule hybride : - le fragment Fc est couplé à un azoture et ledit peptide est couplé à un alcyne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO, ou - le fragment Fc est couplé à un alcyne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO, et ledit peptide est couplé à un azoture, ou - le fragment Fc est couplé à un azoture et ledit peptide est lié à un espaceur lui-même couplé à un alcycne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO, ou - le fragment Fc est couplé à un alcyne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO, et ledit peptide est lié à un espaceur lui-même couplé à un azoture, ou - le fragment Fc est lié à un espaceur, lui-même couplé à un azoture, et ledit peptide est couplé à un alcycne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO, ou - le fragment Fc est lié à un espaceur, lui-même couplé à un alcycne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO, et ledit peptide est couplé à un azoture, ou - le fragment Fc est lié à un espaceur, lui-même couplé à un azoture, et ledit peptide est lié à un espaceur, lui-même couplé à un alcycne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO, ou - le fragment Fc est lié à un espaceur, lui-même couplé à un alcycne, tel qu’un cyclooctyne, et en particulier le DBCO, et ledit peptide est lié à un espaceur, lui-même couplé à un azoture, la liaison covalente entre ledit fragment Fc et ledit peptide, éventuellement en présence d’un ou plusieurs espaceurs, étant créée entre l’azoture et l’alcyne. Cellule immunitaire selon l’une quelconque des revendications précédentes, pour son utilisation comme médicament, notamment pour son utilisation dans le traitement des maladies auto-immunes associées à la production d’auto-anticorps anti-protéines citrullinées, en particulier le syndrome de Gougerot-Sjögren et la Polyarthrite Rhumatoïde.