Brevet FR3125679A1 — publié le 20230203

L’invention concerne l’utilisation d’un extrait de légumineuse de la famille des fabacées pour stimuler la levée de dormance d’une plante pérenne fruitière et un procédé pour stimuler la levée de dormance d’une plante pérenne fruitière, dans lequel un extrait de légumineuse de la famille des fabacées est apporté à ladite plante dans une quantité suffisante pour stimuler la levée de dormance de ladite plante. Stimulation de la levée de dormance chez une plante L’invention trouve son application dans le domaine agroécologique et agricole et concerne en particulier la stimulation de la levée de dormance chez une plante. Arrière-plan technologique La différenciation entre les saisons représente un facteur d’importance pour la vie des plantes et la production végétale, en particulier chez les cultures pérennes. Pendant les périodes de froid, les plantes entrent dans une période appelée « dormance ». La dormance est communément appelée la « pause hivernale » de la plante. Cette période prépare le développement des bourgeons latents au printemps pour permettre le débourrement. La dormance peut être divisée en deux périodes : l’endodormance et l’écodormance. L’endodormance correspond à l’inhibition du développement provenant du méristème du bourgeon latent. Elle est induite par des facteurs internes à la plante qui empêchent la levée de la dormance, même si les facteurs externes sont optimaux pour le développement. Outre la régulation hormonale, l’endodormance est déclenchée par le raccourcissement de la durée du jour et la diminution de la température de l’air. Un refroidissement hivernal est nécessaire pour lever l’endodormance. Les besoins en froid pour lever l’endodormance varient entre les espèces de plantes et les variétés. Lorsque l’endodormance est levée, les bourgeons sont physiologiquement prêts pour débourrer, mais les conditions environnementales doivent être favorables à ce stade pour la levée de l’écodormance. Les plantes peuvent subsister dans un état d’écodormance si les facteurs environnementaux permettant la reprise de l’activité des racines et le développement des bourgeons ne sont pas optimaux. Les principaux facteurs environnementaux responsables de la levée de l’écodormance sont la température (air et sol) et l’eau (teneur en eau du sol). Cependant, en raison du changement climatique, comme par exemple des hivers plus doux, les besoins en froid associés à cette période de dormance ne sont plus satisfaits, ce qui se traduit par des problèmes de levée de dormance (retard, levée incomplète et non homogène des bourgeons, débourrement hétérogène, avortement…) engendrant une moins bonne floraison et au final de moins bons rendements. Ainsi, dans le contexte actuel de réchauffement climatique, la production des arbres fruitiers est menacée et ceci s’avère vrai pour la plupart des espèces fruitières d’intérêt économique. Le calendrier saisonnier des événements phrénologiques est crucial non seulement pour la survie des plantes, mais aussi pour maintenir une production élevée d'arbres fruitiers. Selon certains modèles, à mesure que les températures mondiales augmentent, les récoltes dans certaines régions devraient chuter de 6 à 10% pour chaque augmentation de 1°C de la température. Dans certaines régions où les températures de refroidissement sont insuffisantes, une levée de dormance incomplète a été observée, entraînant un retard de débourrement, un faible taux de débourrement et donc de plus faibles rendements et des fruits de moins bonne qualité. Les solutions envisageables sont de deux types essentiellement. Tout d’abord génétique avec la création ou la sélection de nouvelles variétés. Cependant, la mise au point de nouvelles variétés est un processus très long qui peut durer jusqu'à trente ans et l'effet du changement climatique est d’ores et déjà perçu et a considérablement affecté certaines productions, comme la production de cerises dans le sud-est de la France. Une deuxième solution consiste à appliquer sur la plante des produits stimulant la levée de dormance. Le produit de référence a longtemps été le cyanamide hydrogène (produit DORMEX®). Cependant, ce produit est aujourd’hui interdit par la réglementation Européenne en raison de sa toxicité. De plus, l’application du produit DORMEX® est contraignante en raison de sa toxicité pour les bourgeons débourrés, ce qui nécessite une application à une date très précise avant le débourrement. Il est donc important de trouver des solutions à court et moyen termes pour maintenir la productivité des espèces de plantes pérennes fruitières. C’est dans ce contexte que se situe l’invention qui répond à un besoin de nouvelles solutions techniques pour stimuler la levée de dormance chez les plantes pérennes fruitières. C’est dans ce contexte que le demandeur a mis en évidence, et ceci constitue le fondement de la présente invention, que les extraits de légumineuse de la famille des fabacées permettaient de stimuler la levée de dormance d’une plante pérenne fruitière. Selon un premier aspect, l’invention concerne l’utilisation d’un extrait de légumineuse de la famille des fabacées pour stimuler la levée de dormance d’une plante pérenne fruitière. Selon un deuxième aspect, l’invention concerne un procédé pour stimuler la levée de dormance d’une plante pérenne fruitière, dans lequel un extrait de légumineuse de la famille des fabacées est apporté à ladite plante pérenne fruitière dans une quantité suffisante pour stimuler la levée de dormance de ladite plante pérenne fruitière. Brève description des figures : Rameaux de cerisier, variété ‘Fertard’, prélevés au verger sur des arbres traités ou non avec l’extrait de soja, et ensuite placés en chambre de forçage (25°C, 16h de lumière) dans de l’eau pour évaluer le stade de dormance. : Observations du débourrement de bourgeons de cerisiers, variété ‘Fertard’, traités ou non avec l’extrait de soja, 45 et 56 jours après traitement. : Pourcentage de débourrement après transfert en chambre de forçage pour des rameaux de cerisier, variété ‘Earlise, traités à deux dates différentes. : Pourcentage de débourrement pour des rameaux de cerisier, variété ‘Fertard, coupés et traités ou non en laboratoire avec l’extrait de soja, observés après 10 (1 application) et 22 jours (2 applications) en conditions de croissance (25°C, 16h de lumière). : Pourcentage de débourrement de rameaux prélevés sur des cerisiers, variété ‘Ferrovia’, traités avec l’extrait de soja à une concentration de 3%, et comparés à des rameaux traités avec le produit DORMEX® (AzD) et à l’eau, après trois jours en conditions de croissance (25°C, 16h de lumière). : Pourcentage de débourrement de branches prélevées sur des actinidiers traités avec deux concentrations de l’extrait de soja, et comparés à des rameaux traités avec le produit DORMEX® (AzD) et à l’eau, après trois jours en conditions de croissance (25°C, 16h de lumière). : Ratio calculé entre le glutathion réduit (GSH) et le glutathion oxydé (GSSG) dans des bourgeons de cerisier, variété ‘Fertard’, traités comparé à des bourgeons non traités, prélevés à différentes dates après traitement. : Expression relative des gènes PavDAM4 et PavFT dans des bourgeons de cerisier, variété ‘Fertard’, traités avec l’extrait de soja comparé à des bourgeons non traités, prélevés à différentes dates après traitement. : Chromatogramme issu d’une chromatographie HPAE-PAD de l’extrait « OKEN ». Les pics correspondent à : 1 – Galactose, 2 – Glucose, 3 – Fructose, 4 – Saccharose, 6 – Raffinose, 7 – Stachyose, 9 – Verbascose. Le chromatogramme montre que l’extrait comprend 1,6% de raffinose, 5,3% de stachyose et 0,25% de verbascose. Exemples Exemple 1 : Matériel et méthode a. Préparation de l’extrait de pulpe de soja « OKEN » Dans une cuve de 100 L équipée d’un système d’agitation et d’un système de chauffe, 95 kg d’eau ont été introduits et portés à une température de 22°C +/- 2°C. Puis, sous agitation, 5 kg de poudre d’okara (Produit SOGYFIB) ont été introduits dans la cuve. Le milieu a été maintenu à 22°C +/- 2°C sous agitation pendant 24 h. Le mélange a ensuite été filtré sur filtre poche 200 µm. Le pH du filtrat ainsi obtenu a ensuite été ajusté à 5,5 par l’ajout d’acide sulfurique dilué puis additionné de conservateurs alimentaires (0,1% à 0,3% p/p) pour éviter la prolifération bactérienne. L’extrait ainsi obtenu a été appelé ci-après « Extrait OKEN ». Avant son utilisation, l’extrait « OKEN » a été dilué dans de l’eau à différentes concentrations et supplémenté en surfactant (Exemple 1b). b. Produits testés Les produits suivants ont été testés dans les exemples : - Extrait OKEN dilué à différentes concentrations, supplémenté avec 0,5% de surfactant (“Calanque”, Action Pin, Castets, France ou INEX A selon les exemples). Le surfactant est systématiquement ajouté à l’extrait « OKEN » dilué qui est utilisé dans les exemples, même s’il n’est pas mentionné. - Cyanamide hydrogène (Produit DORMEX®), comme témoin positif, à différentes concentrations, supplémenté avec 0,5% de surfactant (“Calanque”, Action Pin, Castets, France ou INEX A selon les exemples). Le produit DORMEX® a uniquement été testé en laboratoire, car ce produit n'est plus autorisé en champs en Europe. Le surfactant est systématiquement ajouté au DORMEX® dans les exemples, même s’il n’est pas explicitement mentionné. - Eau distillée, comme témoin négatif, supplémentée avec 0,5% de surfactant (“Calanque”, Action Pin, Castets, France ou INEX A selon les exemples). Le surfactant est systématiquement ajouté à l’eau dans les exemples, même s’il n’est pas explicitement mentionné. c. Caractérisation de l’extrait OKEN 1mL de l’extrait OKEN préparé à l’Exemple 1a a été prélevé et centrifugé à 12500 RPM pendant 10min et le surnageant a été filtré sur PVDF à 0.2µm. Le filtrat a ensuite été dilué puis injecté dans un chromatographe HPAE-PAD (ICS5000+ Thermo Scientific) : colonne Thermo Scientific CarboPac PA1, phase mobile Gradient NaOH 200mM, détection ampérométrie pulsée sur électrode d’or. Les résultats sont présentés à la . Le chromatogramme montre que l’extrait comprend 1,6% de raffinose, 5,3% de stacchyose et 0,25% de verbascose. Exemple 2 : Mesure de la stimulation de la levée de dormance sur le cerisier et l’actinidier Essai 1 – Traitement au verger sur cerisiers, variétés ‘Fertard’ et ‘Earlise’ L’extrait OKEN préparé à l’Exemple 1a, dilué dans de l’eau à une concentration de 0,550% et 1,1% v/v, a été pulvérisé sur des cerisiers selon les modalités suivantes : - 1 application à une concentration de 1,1% pour la variété ‘Fertard’ le 12 janvier, i.e. lorsque la plante a reçu ¾ de ses besoins en froid. - 2 applications à une concentration de 0,550% à une semaine d’intervalle pour la variété ‘Earlise’, avec une première application le 12 janvier, i.e. lorsque la plante a reçu ¾ de ses besoins en froid. - 2 applications à une concentration de 0,550% à une semaine d’intervalle pour la variété ‘Earlise’, avec une première application le 24 janvier, i.e. postérieurement à la date à laquelle la plante a reçu ¾ de ses besoins en froid. De l’eau a également été pulvérisée sur des cerisiers (contrôle). Dans cet essai, le tensioactif utilisé était Calanque. Pour chaque variété, des branches de cerisiers traités (OKEN) ou non traités (contrôle) ont été collectées toutes les semaines et placées dans des pots en verre remplis d’eau en chambre de croissance (25°C, 16h de lumière/jour, 60-70% d’humidité) ( ). La chambre de croissance permet d’induire l’ouverture des bourgeons (débourrement). Le pourcentage de débourrement (nombre de bourgeons en débourrement par rapport au nombre total de bourgeons) des branches collectées a été mesuré au cours du temps suite au transfert des branches en chambre de croissance. Le pourcentage de débourrement reflète la levée de dormance : plus le pourcentage de débourrement est élevé après transfert en chambre de croissance, plus la levée de dormance est avancée. Les résultats pour la variété ‘Fertard’, montrent que les rameaux traités avec l’extrait OKEN présentent un débourrement plus précoce ( ), comparés aux rameaux non traités. Les résultats pour la variété ‘Earlise’ montrent que les rameaux traités avec l’extrait OKEN présentent une levée de dormance plus avancée (Figure 3A pour les rameaux ayant reçu une première application le 12 janvier et Figure 3B pour les rameaux ayant reçu une première application le 24 janvier), comparés aux rameaux non traités. L’extrait de soja a donc stimulé la levée de dormance. Essai 2 – Traitement en laboratoire sur rameaux coupés de cerisier, variété ‘Fertard’ Des rameaux ont été prélevés en janvier, lorsque la plante a reçu ¾ de ses besoins en froid, sur des cerisiers de la variété Fertard. Les rameaux ont ensuite été traités au laboratoire par vaporisation de l’extrait OKEN préparé à l’Exemple 1.a, dilué dans de l’eau à une concentration de 0,275% ou 0,550% (v/v), DORMEX® concentré à 2%, ou eau. Dans cet essai, le tensioactif utilisé était Calanque. Les rameaux ont été traités avec une seule application de l’extrait de soja à 0,275% ou traités avec deux applications de l’extrait de soja à 0,550% à 1 semaine d’intervalle. Les rameaux ont été placés en chambre de croissance (25°C, 16h de lumière par jour, 60-70% d’humidité) dans des pots en verre remplis d’eau ( ) pour évaluer le stade de dormance en mesurant le pourcentage de débourrement. Les résultats sont présentés à la . Les résultats montrent que le débourrement des rameaux traités avec l’extrait de soja est plus important que le débourrement des rameaux traités à l’eau ou au DORMEX® 2%, à la fois avec 1 seule application d’extrait de soja (Figure 4A – le débourrement a été observé 10 jours après l’application) et avec 2 applications d’extrait de soja (Figure 4B – le débourrement a été observé à 22 jours après la première application). Ceci indique une levée de dormance plus avancée pour les bourgeons traités avec l’extrait de soja. L’extrait de soja a donc stimulé la levée de dormance. Essai 3 – Traitement au verger sur cerisier , variété ‘ Ferrovia’ L’extrait OKEN préparé à l’Exemple 1a, dilué dans de l’eau à une concentration de 3% v/v, a été pulvérisé sur des cerisiers, variété ‘ Ferrovia’ , à deux dates en février, en comparaison avec une seule application de DORMEX® dilué dans de l’eau à une concentration de 3% v/v selon les recommandations du fabricant, et de l’eau pour contrôle. Dans cet essai, le tensioactif utilisé était INEX A. Des rameaux ont ensuite été collectées après chaque traitement et placées en chambre de croissance (25°C, 16h de lumière par jour, 60-70% d’humidité) dans des pots en verre remplis d’eau ( ) afin d’étudier l’ouverture des bourgeons. L’ouverture des bourgeons des rameaux traités avec l’extrait de soja a été comparée aux rameaux contrôle et aux rameaux traités avec DORMEX®. Les résultats présentés en montrent qu’après 3 jours en conditions de croissance, les rameaux traités avec l’extrait de soja présentent un débourrement plus avancé que les rameaux traités avec les autres traitements. Ceci indique une levée de dormance plus avancée pour les bourgeons traités avec l’extrait de soja. L’extrait de soja a donc stimulé la levée de dormance. Essai 4 – Traitement au verger sur actinidier, variété ‘ Yellow Latina’ L’extrait OKEN préparé à l’Exemple 1a, dilué dans de l’eau à une concentration de 0,75% ou 3% v/v, a été pulvérisé sur des actinidiers, variété ‘ Yellow Latina’ , en comparaison avec une seule application du produit DORMEX® dilué dans de l’eau à une concentration de 3% v/v selon les recommandations du fabricant, et de l’eau (contrôle). Dans cet essai, le tensioactif utilisé était Inex A. Les rameaux traités ont ensuite été prélevés et transférés en chambre de croissance (25°C, 16h de lumière, 60-70% d’humidité) dans des pots en verre remplis d’eau ( ) afin d’étudier l’ouverture des bourgeons. Après 11 jours, les résultats présentés en montrent que le pourcentage de débourrement est plus important pour les bourgeons traités avec l’extrait de soja ou DORMEX® que pour le contrôle. Ceci indique une levée de dormance plus avancée pour les bourgeons traités avec l’extrait de soja et DORMEX®. L’extrait de soja a donc stimulé la levée de dormance. Exemple 3 : Mesure de marqueurs spécifiques de la levée de dormance Matériel et méthode Prélèvement des bourgeons Des bourgeons de la variété de cerisier ‘Fertard’ ont été prélevés directement sur des arbres pulvérisés avec l’extrait OKEN préparé à l’Exemple 1a, dilué dans de l’eau à une concentration de 0,55% v/v ou avec de l’eau (contrôle) (Tableau 1). Année Essai Espèce Variété Nombre d'application Traitement Concentration Date de traitement 1 Date de traitement 2 2017 Vaporisation sur arbre Cerisier 'Fertard' 2 OKEN 0,55% 17/01/2017 24/01/2017 2017 Vaporisation sur arbre Cerisier 'Fertard' 1 Contrôle (eau) 17/01/2017 Après prélèvement, les bourgeons ont immédiatement été congelés dans de l’azote liquide et ont ensuite été broyés en poudre pour effectuer les analyses. Dosage GSH et GSSG Extraction des métabolites du soufre 70 mg de poudre de bourgeons congelés ont été pesés dans un tube de 2 ml et maintenus dans de l'azote liquide avant de passer à l'étape suivante. 500 µL d'eau milliQ froide/méthanol 70:30 v/v (stocké à -20°C) contenant 0,4% de solvant acide perchlorique (v/v) ont été ajoutés aux tubes et rapidement mélangés avec un vortex pendant 10 minutes. Ensuite, les échantillons ont été centrifugés (Centrifugeuse 5427 R, Eppendorf) à 12 700 tr/min pendant 15 minutes à 4°C. 400 µL de chaque surnageant ont été soigneusement transférés dans de nouveaux tubes de 2 ml sans perturber le culot. Une seconde extraction a été réalisée sur la poudre restante en ajoutant 500 µL d'acide perchlorique 0,1% (v/v dans l'eau milliQ). Les échantillons ont été mélangés avec un vortex pendant 5 minutes puis centrifugés à 12 700 tr/min pendant 15 minutes à 4°C. A nouveau, 400 µL de chaque surnageant ont été soigneusement transférés sans perturber le culot dans les tubes contenant les surnageants précédents. Les tubes ont été inversés plusieurs fois (ou vortex) pour homogénéiser le liquide. Une centrifugation à 12 700 rpm pendant 10 minutes à 4°C a été réalisée afin culoter les particules en suspension qui peuvent interférer avec les étapes ultérieures. Le surnageant de chaque tube a été récupéré dans de nouveaux tubes de 2 ml sans perturber le culot. Enfin, les surnageants ont été dilués 2 fois avec de l'acide formique à 0,1% (v/v dans de l'eau milliQ) et transférés dans des flacons LC-MS de 2 ml. Quantification des métabolites du soufre par UPLC-QToF L'analyse par chromatographie liquide ultra-haute performance a été réalisée en utilisant un système UPLC Waters Acquity H-Class (Waters Corp, Milford, USA). La séparation des métabolites contenant du soufre, GSH, GSSG, SAM, OAS, Met, a été réalisée à l'aide d'une colonne Waters UPLC HSS T3 (2,1 x 100 mm, 1,8 m). La phase mobile constituée d'eau contenant 0,1 % d'acide formique (A) et d'acétonitrile/méthanol 50:50 v/v contenant 0,1 % d'acide formique (B) a été appliquée avec le gradient d'élution optimisé comme suit : 100 % A à 0-1,5 min , 100-80 % A à 1,5–2 min, 80-20 % A à 2-2,5 min, 20 % A à 2,5-4,5 min, 20-100 % A à 4,5-5 min, 100 % A à 5-7 min. Le débit a été maintenu à 0,4 mL/min et la température de la colonne a été maintenue à 25°C. La détection par spectrométrie de masse à haute résolution des métabolites a été effectuée par le spectromètre de masse quadripole à temps de vol Waters Xevo G2-S (QToF MS) (Waters Corp, Milford, USA) équipé d'une source d'ionisation par électrospray (ESI). La tension positive de la source ESI a été fixée à 0,5 kV et la tension au cône était de 15 V, tandis que la température de la source était maintenue à 130°C avec un débit de gaz au cône de 20 L/h. La température de désolvatation était de 500°C avec un débit de gaz de désolvatation de 800 L/h. La Leucine-Enkephalin (Waters, Manchester, Royaume-Uni) a été utilisée comme référence de masse (ion à m/z 556,2771 en mode positif), qui a été introduite par un Lockspray à 10 µL/min pour l'étalonnage des données en temps réel. Les données MSE ont été acquises en mode centroïde à l'aide d'une plage de balayage de 50 à 800 Da, d'un temps de balayage de 0,1 s, d'une résolution de 20 000 (FWHM) et d'une rampe d'énergie de collision de 40 à 80 V. Les ions moléculaires [M+ H]+ ont été détectés en ionisation positive. Les pics chromatographiques ont été extraits des chromatogrammes de balayage complet à l'aide du logiciel MassLynx V4.1 (Waters Inc., États-Unis), sur la base des ions [M+H]+. Les zones de pic ont été intégrées à l'aide du logiciel TargetLynx (Waters Inc., USA). Expression des gènes PavDAM4 et PavFT par qRT-PCR L’ARN total a été extrait à partir de 50-60 mg de poudre de bourgeon congelés en utilisant le mini kit RNAeasy Plant (Qiagen), suivant les recommandations du fabricant avec quelques modifications mineures (1.5% PVP ajouté au tampon RLT). L’ADN génomique a été éliminé par traitement DNAse I (TURBO DNA-free kit, AM1907, Invitrogen) puis l’ARN purifié a été transcrit en utilisant le kit Transcriptor First-Strand cDNA Synthesis (04379012001, Roche), selon le protocole du fabricant. Les PCR quantitatives (qRT-PCR) ont été réalisées avec le mélange LightCycler 480 DNA SYBR Green I Master mix (04707516001, Roche), avec 0.3 µM d’amorces et 2 µL d’ADNc dilué 10 fois après synthèse. La fluorescence a été quantifiée par 45 cycles PCR (15s dénaturation à 94°C, 30s d’hybridation gà 60°C et 30s de synthèse à 72°C) sur le LightCycler 480 (Roche). L’expression relative a été analysée selon la méthode des deltas à partir du gène de référence UBQ . Les amorces utilisées sont : PavFT (GGACCCGCTTGTTGTT, GTAAACGGGTCTAAAACATCAC) (SEQ ID NO : 1, SEQ ID NO : 2), PavDAM4 (TCAAAGAGGAGAAGAGGGA, TGCCACCTCAGATTCACA) (SEQ ID NO : 3, SEQ ID NO : 4) et PavUBQ (TTGTTCCATACACAGTAGCAT, GTCTGATACCGTCATTGCTTA) (SEQ ID NO : 5, SEQ ID NO : 6). Résultats Les résultats sur le ratio « GSH/GSSG » sont présentés à la . L’augmentation du ratio GSH/GSSG est un marqueur de la levée de dormance et les résultats montrent un ratio beaucoup plus important dans les bourgeons traités avec l’extrait de soja dès 13 jours après traitement comparé au contrôle non traité, ce qui montre que la levée de dormance est stimulée par le traitement avec l’extrait de soja. Les résultats sur l’expression des gènes PavDAM4 et PavFT sont présentés à la . Les résultats montrent que le gène PavDAM4 est moins exprimé dans les bourgeons traités avec l’extrait de soja comparé au contrôle, ce qui suggère que la levée de dormance est stimulée avec l’extrait de soja. Ces résultats sont confirmés par l’expression de PavFT , marqueur de la levée de dormance précoce, qui est plus élevée dans les bourgeons traités avec l’extrait de soja comparé aux bourgeons non traités. Références citées [1] Akiko et al., Physiological differences between bud breaking and flowering after dormancy completion revealed by DAM and FT/TFL1 expression in Japanese pear (Pyrus pyrifolia) , Tree Physiology, 2015. [2] Vimont et al., From bud formation to flowering: transcriptomic state defines the cherry developmental phases of sweet cherry bud dormancy , BMC Genomics, 2019. [3] Rinne et al., Chilling of Dormant Buds Hyperinduces FLOWERING LOCUS T and Recruits GA-Inducible 1,3-β-Glucanases to Reopen Signal Conduits and Release Dormancy in Populus , The Plant Cell, 2011. [4] Jimenez et al., Gene expression of DAM5 and DAM6 is suppressed by chilling temperatures and inversely correlated with bud break rate , Plant Molecular Biology, 2010. [5] Beauvieux et al., Bud Dormancy in Perennial Fruit Tree Species: A Pivotal Role for Oxidative Cues , Front. Plant Sci., 2018. Utilisation d’un extrait de légumineuse de la famille des fabacées pour stimuler la levée de dormance d’une plante pérenne fruitière. Procédé pour stimuler la levée de dormance d’une plante pérenne fruitière, dans lequel un extrait de légumineuse de la famille des fabacées est apporté à ladite plante dans une quantité suffisante pour stimuler la levée de dormance de ladite plante. Utilisation ou procédé selon l’une quelconque des revendications 1 ou 2, dans lequel l’extrait de légumineuse de la famille des fabacées est un extrait de soja, par exemple un extrait aqueux de fibres ou pulpe de soja. Utilisation ou procédé selon l’une quelconque des revendications 1 à 3, dans lequel la plante est une plante pérenne, par exemple une plante pérennes fruitières. Utilisation ou procédé selon l’une quelconque des revendications 1 à 4, dans lequel la plante pérenne fruitière est un arbre fruitier, par exemple un arbre fruitier à feuilles caduques, ou une liane à fruit. Utilisation ou procédé selon la revendication 5, dans lequel : - l’arbre fruitier à feuilles caduques est un cerisier, un prunier, un pêcher, un abricotier, un pommier, un poirier, un citronnier, ou un oranger ; - la liane à fruit est une vigne ou un actinidier. Utilisation ou procédé selon l’une quelconque des revendications 1 à 6, dans lequel l’extrait comprend un ou plusieurs sucres choisis parmi le raffinose, le stachyose et le verbascose. Utilisation ou procédé selon l’une quelconque des revendications 1 à 7, dans lequel l’extrait est apporté à la plante sous forme liquide. Utilisation ou procédé selon l’une quelconque des revendications 1 à 8, dans lequel l’extrait est apporté à la plante par voie aérienne, de préférence l’extrait est appliqué sur les bourgeons de la plante. Utilisation ou procédé selon l’une quelconque des revendications 1 à 9, dans lequel l’extrait est apporté à la plante quand ladite plante pérenne fruitière a eu ¾ de ses besoins en froid. Utilisation ou procédé selon l’une quelconque des revendications 1 à 10, dans lequel l’extrait est mélangé à un tensioactif. Utilisation ou procédé selon l’une quelconque des revendications 1 à 11, dans lequel l’extrait stimule l’expression du gène FLOWERING LOCUS T ( FT) et/ou réprime l’expression du gène DORMANCY ASSOCIATED MADS-box 4 ( DAM4) . Utilisation ou procédé selon l’une quelconque des revendications 1 à 12, dans lequel ledit extrait augmente le ratio GSH (forme réduite du Glutathion) / GSSG (Forme oxydée du Glutathion) au niveau des bourgeons de la plante ayant reçu l’extrait par rapport à une plante n’ayant pas reçu l’extrait. Utilisation ou procédé selon l’une quelconque des revendications 1 à 13, dans lequel ladite plante pérenne fruitière n’est pas traitée au cyanamide hydrogène.