Brevet FR3087338A1 — publié le 20200424

EXTRAIT D'ALGUES POUR SON UTILISATION POUR LE TRAITEMENT OU LA PREVENTION DE L'IMMUNOSUPPRESSION POST-TRAUMATIQUE La présente invention concerne un extrait d'algues de l'ordre des ulvales comprenant des polysaccharides polyanioniques sulfatés et non sulfatés dont le poids moléculaire est inférieur ou égal à 50 kDa, pour son utilisation pour la prévention et/ou le traitement de complications induites par une immunodépression post-traumatique. Le polytraumatisme ou traumatisme sévère s'accompagne d'un syndrome de réponse inflammatoire systémique (SRIS) causé par la libération de composants intracellulaires nommés « danger-associated molecular patterns » (DAMP). Ces DAMP vont directement stimuler des récepteurs spécifiques, les « pattern recognition receptors », présents sur les cellules de l'immunité, entraînant le relargage de médiateurs de l'inflammation. Pour éviter les complications systémiques d'un SRIS non contrôlé, l'organisme développe précocement une réponse anti-inflammatoire systémique compensatrice (CARS). Le CARS entraîne une immunodépression post-traumatique, de durée et d'amplitude variable. Cette immunodépression est « physiologique » au départ et présente chez tous les patients. L'immunodépression devient pathologique si elle perdure, entraînant alors des infections post-traumatiques (pneumopathies essentiellement) qui sont la première cause de complications en réanimation (Roquilly et al., 2015, Réanimation, 24 :S285-S290). Le traumatisme crânien est une cause majeure de morbi-mortalité, avec un taux de mortalité global des victimes variant selon les estimations de 5 à 25 pour 100 000 patients. Environ un tiers des facteurs de morbi-mortalité sont des complications évitables, survenant en réanimation (infections, événements thrombo-emboliques), principalement due aux complications respiratoires. La morbidité et les coûts de santé occasionnés par les pneumonies acquises sous ventilation mécanique (PAVM) en font l'une des complications liées aux soins les plus. Entre 40 et 60% des patients atteints de traumatisme crânien grave hospitalisés en réanimation présenteront une PAVM, dont la moitié est causée par Staphyloccocus aureus sensible à la méticiline (SAMS). Au cours de son hospitalisation en réanimation, un patient traumatisé crânien souffrant de PAVM subira plus d'agressions cérébrales d'origine systémique (fièvre, hypotension, hypoxie, hypercapnie) ; la durée de ventilation mécanique sera également prolongée, ainsi que le séjour en réanimation. Tous ces facteurs contribuent d'une part à l'apparition de nouvelles lésions cérébrales ischémiques sur hypoxie et d'autre part à un retard de prise en charge post-réanimatoire (rééducation...). Le développement d'une PAVM chez un patient 2 traumatisé crânien est donc un facteur de risque indépendant de moins bon devenir neurologique à long terme. La susceptibilité des patients traumatisés crânien aux infections nosocomiales et notamment aux PAVM est due à l'apparition d'une immunodépression post-traumatique. 5 Au niveau cellulaire, cette immunodépression post-traumatique se déroule à plusieurs niveaux : 1. Une altération de la capacité de présentation de l'antigène par les cellules présentatrices d'antigène (CPA), principalement Cellules Dendritiques (CDs) et monocytes. Les CDs ont un rôle central de capture et de présentation de l'antigène, ainsi 10 que d'activation des lymphocytes (T et NK) via la sécrétion de cytokines pro- inflammatoires (Interleukine-12). 2. Une diminution de la capacité de sécrétion de cytokines pro-inflammatoires. La coopération entre les CPA et les lymphocytes en cas d'agression pulmonaires aigüe est essentielle. Ainsi, une altération de la production d'IL-12, conséquence du traumatisme 15 crânien induira une diminution de sécrétion de cytokines pro-inflammatoires telles que l'INF y par les cellules lymphoïdes (Spolarics et al., 2003, Crit. Care Med.;31(6):1 722-9). D'autre part, l'augmentation de la sécrétion de cytokines anti-inflammatoires (IL-10) via l'hyper-activation sympathique contribue à approfondir cet état d'immunodépression (Roquilly et al., 2014, Crit. Care Med., 42(12):e752-61). L'altération de cette « boucle » de 20 la réponse immunitaire innée provoque donc une diminution des capacités de l'organisme à lutter contre les infections secondaires. 3. Un épuisement des lymphocytes T (« T cell exhaustion »), phénomène également retrouvé dans l'immunodépression post-septique. Cet épuisement correspond à la perte progressive de fonctions pro-inflammatoires des lymphocytes en présence 25 d'une charge antigénique élevée. Ce phénomène permettrait d'expliquer en partie la forte incidence des PAVM chez les patients traumatisés crâniens. Ce phénomène d' 95% de déplétion en NK pulmonaires) ; - n'induit, dans les poumons, aucune augmentation du taux des chimiokines impliquées dans le chimiotactisme des cellules NK Lorsque l'infection pulmonaire bactérienne chez la souris est réalisée en l'absence 30 de traumatisme crânien (et donc d'immunodépression), l'extrait d'algues n'induit pas de stimulation des cellules de l'immunité innée, que ce soit via une stimulation de la sécrétion d'IL-12 par les CDs, de TNFa par les macrophages ou d'INFy par les cellules NK ou LT, ou via une stimulation de l'expression membranaire du CMH II par les CDs, et ne limite pas la dissémination bactérienne. 5 Par ailleurs, la stimulation directe in vitro de cellules NK pulmonaires de souris naïves ou traumatisées, par l'extrait d'algue, n'induit aucune augmentation de la production d'interféron y ou du marqueur KLRG1 d'activation des cellules NK. Ces résultats montrent donc l'utilité d'un extrait d'algues de l'ordre des ulvales, en 5 particulier d'algues vertes de type Ulva, comprenant des polysaccharides polyanioniques sulfatés et non sulfatés dont le poids moléculaire est inférieur ou égal à 50 kDa, pour prévenir ou traiter l'immunodépression post-traumatique. Résumé de l'invention 10 L'invention concerne un extrait d'algues de l'ordre des ulvales comprenant des polysaccharides polyanioniques sulfatés et non sulfatés dont le poids moléculaire est inférieur ou égal à 50 kDa, pour son utilisation pour la prévention et/ou le traitement d'une complication induite par une immunodépression post-traumatique. Selon un mode de réalisation, la complication induite est une complication 15 septique de l'immunodépression post-traumatique. Selon certains modes de réalisation, la complication sceptique est une infection nosocomiale, notamment une infection nosocomiale sélectionnées dans le groupe constitué des pneumopathies, telles que les pneumonies acquises sous ventilation mécanique (PAVMs), des infections urinaires, des infections sur cathéters veineux centraux, des infections bactériennes cérébroméningées 20 telles méningites empyèmes et abcès cérébraux. Selon un mode de réalisation, l'immunodépression post-traumatique est consécutive à un ou plusieurs traumatismes sévères, en particulier un traumatisme crânien sévère. L'extrait d'algues de l'ordre des ulvales est de préférence un extrait d'algues vertes 25 de type Ulva. Selon un mode de réalisation, lesdits polysaccharides polyanioniques sulfatés et non sulfatés de poids moléculaire inférieur ou égal à 50 kDa ont un poids moléculaire inférieur à 15 kDa, et de préférence supérieur à 500 Da. De préférence, l'extrait d'algues ne comprend pas de polysaccharides polyanioniques sulfatés ou non sulfatés dont le 30 poids moléculaire est supérieur à 15 kDa. Selon un mode de réalisation, l'extrait d'algue comprend : - du mannose ; et/ou - de l'arabinose ; et/ou - du galactose; et/ou 35 - du glucose; et/ou - du rhamnose; et/ou 6 du xylose; et/ou de l'acide glucuronique. Selon un mode de réalisation, l'extrait d'algue comprend : de 10 à 50 % de carbone ; 5 de 1 à 10% d'hydrogène ; de 1 à 5 % d'azote ; de 20 à 50 % d'oxygène ; et de 1 à 15 % de soufre ; en pourcentage massique de la matière sèche totale de l'extrait d'algues. 10 Selon un autre mode de réalisation, l'extrait d'algues est obtenu par un procédé de préparation dans lequel: a) les algues sont lavées et dessablées ; b) lesdites algues sont broyées ; c) la phase solide du broyat est séparée de sa phase liquide ; 15 d) ladite phase liquide est clarifiée ; e) le jus obtenu à l'étape d) est ultrafiltré sur une membrane de 50 kDa ou moins; et f) le jus de filtration obtenu à l'étape e) est concentré puis séché. Description détaillée 20 Selon un aspect, l'invention concerne un extrait d'algues de l'ordre des ulvales comprenant des polysaccharides polyanioniques sulfatés et non sulfatés dont le poids moléculaire est inférieur ou égal à 50 kDa, pour son utilisation pour la prévention et/ou le traitement de complications induites par une immunodépression post-traumatique. Selon un aspect, l'invention concerne une méthode de traitement prophylactique 25 ou thérapeutique de complications induites par une immunodépression post-traumatique chez un sujet le nécessitant, la méthode comprenant l'administration audit sujet d'une quantité efficace d'un extrait d'algues de l'ordre des ulvales comprenant des polysaccharides polyanioniques sulfatés et non sulfatés dont le poids moléculaire est inférieur ou égal à 50 kDa. 30 Extrait d'algues de l'ordre des ulvales Un extrait d'algues comprenant des polysaccharides polyanioniques sulfatés et non sulfatés dont le poids moléculaire est inférieur ou égal à 50 kDa a notamment été décrit dans la demande de brevet W02015071497. 7 L'extrait d'algues de l'ordre des ulvales comprenant des polysaccharides polyanioniques sulfatés et non sulfatés dont le poids moléculaire est inférieur ou égal à 50 kDa est en particulier un extrait d'algues vertes de type Ulva. Par « algues vertes de type Ulva » on entend les algues vertes regroupées dans le 5 genre Ulva, de la famille des Ulvaceae, de l'ordre des ulvales. On peut notamment citer les espèces et sous-espèces suivantes : Ulva acanthophora, Ulva anandii, Ulva angusta, Ulva arasakii, Ulva armoricana, Ulva atroviridis, Ulva attenuata, Ulva beytensis, Ulva bifrons, Ulva brevistipitata, Ulva bulbosa, Ulva burmanica, Ulva byssoides, Ulva californica, Ulva chaetomorphoides, Ulva clathrata, Ulva coccinea, Ulva compressa, Ulva 10 conglobata, Ulva cornucopiae, Ulva cornuta, Ulva covelongensis, Ulva crassa, Ulva crassimembrana, Ulva curvata, Ulva dactylifera, Ulva denticulata, Ulva elegans, Ulva elminthoides, Ulva enteromorpha, Ulva erecta, Ulva expansa, Ulva fascia ta, Ulva fenestrata, Ulva flexuosa, Ulva gelatinosa, Ulva geminoidea, Ulva gigantea, Ulva grandis, Ulva hendayensis, Ulva hookeriana, Ulva hopkirkii, Ulva indica, Ulva intestines, Ulva 15 intestinaloides, Ulva intricata, Ulva intybacea, Ulva javanica, Ulva kylinii, Ulva lactuca, Ulva lactucaefolia, Ulva laetevirens, Ulva laingii, Ulva linearis, Ulva lingulata, Ulva linkiana, Ulva lima, Ulva lippii, Ulva litoralis, Ulva littorea, Ulva tobata, Ulva lubrica, Ulva marginata, Ulva micrococca, Ulva myriotrema, Ulva neapolitana, Ulva nematoidea, Ulva ohnoi, Ulva olivacea, Ulva olivaceum, Ulva pacifica, Ulva papenfussii, Ulva paradoxa, 20 Ulva parva, Ulva parvula, Ulva patengensis, Ulva percursa, Ulva pertusa, Ulva phyllosa, Ulva popenguinensis, Ulva porrifolia, Ulva procera, Ulva profunda, Ulva prolifera, Ulva pseudocurvata, Ulva pseudolinza, Ulva pulchra, Ulva purpurascens, Ulva quilonensis, Ulva radia ta, Ulva ralfsii, Ulva ranunculata, Ulva reticulata, Ulva rhacodes, Ulva rigida, Ulva rotundata, Ulva rubens, Ulva saifullahii, Ulva scagelii, Ulva scandinavica, Ulva 25 sericea, Ulva serra ta, Ulva simplex, Ulva sorensenii, Ulva spinulosa, Ulva stenophylla, Ulva stipitata, Ulva sublittoralis, Ulva subulata, Ulva taeniata, Ulva tenera, Ulva tetragona, Ulva torta, Ulva tuberosa, Ulva umbilicata, Ulva cincles, Ulva uncinata, Ulva usneoides, Ulva utricularis, Ulva utriculosa, Ulva uvoides, Ulva ventricosa. 30 L'extrait d'algues ci-dessus comprend des polysaccharides polyanioniques sulfatés et non sulfatés dont le poids moléculaire est inférieur ou égal à 50 kDa. Plus particulièrement, l'extrait d'algues comprend des polysaccharides polyanioniques sulfatés et non sulfatés de poids moléculaire inférieur ou égal à 50 kDa, dont le poids moléculaire est inférieur à 40, 30, 20 ou 15 kDa. Plus particulièrement encore, les polysaccharides 35 polyanioniques sulfatés et non sulfatés de l'extrait d'algues ont un poids moléculaire inférieur ou égal à 15 kDa. De préférence, les polysaccharides polyanioniques sulfatés et 8 non sulfatés de l'extrait d'algues ont un poids moléculaire supérieur à 500 Da, de préférence supérieur à 750 Da. Selon un mode réalisation de l'invention, l'extrait d'algues ne comprend pas de polysaccharides polyanioniques sulfatés ou non sulfatés dont le poids moléculaire est 5 supérieur à 50 kDa (ou supérieur à 40, 30, 20 ou 15 kDa lorsque les polysaccharides sulfatés et non sulfatés sont définis par un poids moléculaire inférieur à 40, 30, 20 ou 15 kDa, respectivement). Ainsi, selon un mode de réalisation, lorsque l'extrait d'algues comprend des polysaccharides polyanioniques sulfatés et non sulfatés dont le poids moléculaire est inférieur ou égal à 15 kDa, l'extrait d'algues ne comprend pas de 10 polysaccharides polyanioniques sulfatés ou non sulfatés dont le poids moléculaire est supérieur à 15 kDa. Un dalton (Da) est une unité massique définie comme étant égal à un douzième de la masse d'un atome de carbone 12, masse qui s'avérera ensuite estimée à partir d'un mélange de plusieurs isotopes (principalement carbone 12 et carbone 13, 15 possédant respectivement 6 et 7 neutrons en plus des 6 protons de tout atome de carbone). Un dalton est, avec une assez bonne précision, la masse d'un atome d'hydrogène, la valeur exacte étant 1,00794 uma (unité de masse atomique). Le kilodalton (kDa) est égal à 1000 Da. Dans le cadre de la présente invention, les masses mentionnées en kDa sont déterminées par toute méthode usuellement employée par 20 l'homme du métier, en particulier les masses des polysaccharides polyanioniques sulfatés et non sulfatés des extraits d'algues pourront être discriminées par ultrafiltration sur des membranes laissant uniquement filtrer des molécules de tailles prédéterminées. Selon un mode de réalisation les polysaccharides polyanioniques sulfatés et non 25 sulfatés dont le poids moléculaire est supérieur à 50 kDa, tel que décrit ci-dessus, ont un degré de polymérisation supérieur à 5 unités oses. Dans l'extrait d'algues tel que défini ci-dessus, les polysaccharides comprennent du mannose et/ou de l'arabinose, préférentiellement du mannose. Plus particulièrement encore, l'extrait d'algues comprend au moins 0.005% de mannose et/ou au moins 0.005% 30 d'arabinose, en poids par rapport au poids de la matière sèche totale de l'extrait d'algues, notamment au moins au 0,01 % de mannose et/ou au moins 0,01 % d'arabinose. Préférentiellement l'extrait d'algues comprend au moins 0,005% de mannose. Encore plus particulièrement, l'extrait d'algues comprend du mannose en une quantité allant de 0,005 à 0,5%, par exemple de 0,005 à 0,2% ou de 0,15 à 0,5% et/ou de 35 l'arabinose en une quantité allant de 0,005 à 0,5%, en poids par rapport au poids de la matière sèche totale de l'extrait d'algues, préférentiellement du mannose en une quantité 9 allant de 0,005 à 0,5%, par exemple de 0,005 à 0,2% ou de 0,15 à 0,5% en poids par rapport au poids de la matière sèche totale de l'extrait d'algues. Encore plus particulièrement, l'extrait d'algues comprend du mannose en une quantité allant de 0,01 à 0,5%, par exemple de 0,01 à 0,2% ou de 0,2 à 0,5% et/ou de 5 l'arabinose en une quantité allant de 0,01 à 0,5%, en poids par rapport au poids de la matière sèche totale de l'extrait d'algues, notamment du mannose en une quantité allant de 0,03 à 0,45%, par exemple de 0,03 à 0,15% ou de 0,15 à 0,45% et/ou de l'arabinose en une quantité allant de 0,01 à 0,2%. Préférentiellement, l'extrait d'algues comprend du mannose en une quantité allant de 10 0,01 à 0,50%, par exemple de 0,01 à 0,20% ou de 0,20 à 0,5%, notamment du mannose en une quantité allant de 0,03 à 0,45%, par exemple de 0,03 à 0,15% ou de 0,15 à 0,45%%, en poids par rapport au poids de la matière sèche totale de l'extrait d'algues. Selon un mode de réalisation, l'extrait d'algues comprend : du galactose; et/ou 15 du glucose; et/ou du rhamnose; et/ou du xylose; et/ou de l'acide glucuronique. Plus particulièrement, l'extrait d'algues comprend: 20 de 0,05 à 0,5% de galactose, notamment de 0,1 à 0,4%; et/ou de 0,005 à 0,5% de glucose, en particulier de 0,005 à 0,05% notamment de 0,01 à 0,03%, ou de 0,05 à 0,5% ; et/ou; de 2 à 15 % de rhamnose, notamment de 5 à 10%; et/ou de 0,1 à 1% de xylose, notamment de 0,3 à 0,7%; et/ou 25 de 1 à 7% d'acide glucuronique notamment de 1 à 5%; en poids par rapport au poids de la matière sèche totale de l'extrait d'algues. Ainsi, selon un mode de réalisation l'extrait d'algues comprend: - du mannose ; et/ou - de l'arabinose ; et/ou 30 du galactose; et/ou du glucose; et/ou - du rhamnose; et/ou du xylose; et/ou de l'acide glucuronique. 35 On peut plus particulièrement citer par exemple l'extrait d'algues comprenant : 10 de 0,01 à 0,5% de mannose, par exemple de 0,01 à 0,2%, notamment de 0,03 à 0,15% ou de 0,2 à 0,5% ; et/ou de 0,01 à 0,5% d'arabinose, notamment de 0,01 à 0,2% ; et/ou de 0,05 à 0,5% de galactose, notamment de 0,1 à 0,4%; et/ou 5 de 0,005 à 0,5% de glucose, en particulier de 0,005 à 0,05%, notamment de 0,01 à 0,03%, ou de 0,05 à 0,5%; et/ou de 2 à 15 % de rhamnose, notamment de 5 à 10%; et/ou de 0,1 à 1% de xylose, notamment de 0,3 à 0,7%; et/ou de 1 à 7% d'acide glucuronique, notamment de 1 à 5%; 10 en poids par rapport au poids de la matière sèche totale de l'extrait d'algues. On peut encore plus particulièrement citer par exemple l'extrait d'algues comprenant : 0,09% de mannose; et/ou - 0,1% d'arabinose ; et/ou 15 0,3% de galactose; eVou 0,02% de glucose ; et/ou 8,1% de rhamnose; et/ou 0,5% de xylose; et/ou 2,6% d'acide glucuronique; 20 en poids par rapport au poids de la matière sèche totale de l'extrait d'algues. On peut également citer par exemple l'extrait d'algues comprenant : 0,3% de mannose; et/ou 0,2% de galactose; et/ou 0,4% de glucose ; et/ou 25 7,9% de rhamnose; et/ou 0,5% de xylose; et/ou 4,9% d'acide glucuronique; en poids par rapport au poids de la matière sèche totale de l'extrait d'algues. 30 Selon un mode de réalisation, l'extrait d'algues comprenant des polysaccharides polyanioniques sulfatés et non sulfatés dont le poids moléculaire est inférieur ou égal à 50 kDa, tel que décrit ci-dessus, comprend : de 10 à 50 % de carbone ; de 1 à 10% d'hydrogène ; 35 de 1 à 5 % d'azote ; de 20 à 50 % d'oxygène ; et 11 de 1 à 15 % de soufre ; en pourcentage massique de la matière sèche totale de l'extrait d'algues. Plus particulièrement encore, l'extrait d'algues comprend : de 15 à 30 % de carbone ; 5 de 3 à 6% d'hydrogène ; de 1 à 3 % d'azote ; de 25 à 40 % d'oxygène ; et de 2,5 à 10 % de soufre ; en pourcentage massique de la matière sèche totale de l'extrait d'algues. 10 Selon un autre mode de réalisation de l'invention, l'extrait d'algues comprend : de 10 à 50 % de carbone ; de 1 à 10% d'hydrogène ; de 0,5 à 5 % d'azote ; de 20 à 60 % d'oxygène ; et 15 de 1 à 15 % de soufre ; en pourcentage massique de la matière sèche totale de l'extrait d'algues. Les autres éléments chimiques présents dans la matière sèche de l'extrait sont notamment représentés par les minéraux (Ca, K, Na, Mg, Al, Cl, I, P, Fe, etc). Plus particulièrement, l'extrait d'algues tel que décrit dans le cadre de la présente 20 invention est caractérisé par le spectre RMN 1H présenté en Figure 1. Ce spectre RMN 1H a été enregistré à 298 K sur un spectromètre Bruker Avance 500 équipé d'une sonde cryogénique inverse 5 mm 1H/13C/15N ICI. Avant l'analyse, les échantillons ont été dissous dans 99,97% d'atome de D20. Les déplacements chimiques sont exprimés en ppm par rapport à un étalon externe (acide triméthylsilylpropionique). 25 Aucune suppression du signal HOD n'a été réalisée. L'extrait d'algues de l'ordre des ulvales comprenant des polysaccharides polyanioniques sulfatés et non sulfatés dont le poids moléculaire est inférieur ou égal à 50 kDa, tel que décrit ci-dessus, est susceptible d'être obtenu, ou est obtenu, par un procédé 30 de préparation dans lequel: a) les algues sont lavées et dessablées ; b) lesdites algues sont broyées ; c) la phase solide du broyat est séparée de sa phase liquide ; d) ladite phase liquide est clarifiée ; 35 e) le jus obtenu à l'étape d) est ultrafiltré sur une membrane de 50 kDa ou moins; et f) le jus de filtration obtenu à l'étape e) est concentré puis séché. 12 Selon un mode de réalisation, le procédé de préparation comprend en outre une étape de congélation suivie d'une décongélation, entre l'étape a) de lavage/dessablage et l'étape b) de broyage. En particulier, pour la mise en oeuvre du procédé tel qu'indiqué dans le cadre de la 5 présente invention, dans l'étape a) de celui-ci, les algues sont lavées à l'eau douce. Elles peuvent être dessablées par tout moyen mis à disposition de l'homme du métier. Lesdites algues sont ensuite broyées, notamment au moyen d'un broyeur, comme par exemple un affineur ou un cutteur. 10 Par la suite, la phase solide du broyat, le marc, est séparée de sa phase liquide, le jus, par pressage du broyat, par exemple à l'aide d'une presse à bande ou à plateaux, ou par centrifugation. Par « jus », on entend le jus cytoplasmique qui inclue la structure pariétale de la double structure des cellules des algues. 15 La phase liquide obtenue est ensuite clarifiée, par exemple avec un clarificateur à assiettes, ou par centrifugation, décantation ou filtration (par exemple à poche ou à plaque). Le jus obtenu est ensuite ultrafiltré. Selon un mode de réalisation pour la mise en oeuvre du procédé tel qu'indiqué 20 dans le cadre de la présente invention, l'ultrafiltration est réalisée sur une membrane de 50 kDa ou moins, notamment sur une membrane de 40, 30, 20 ou 15 kDa. Plus particulièrement, la membrane est une membrane de 15 kDa ou moins. Cette membrane peut être par exemple une membrane de céramique ou une membrane organique. Plus particulièrement, la membrane est une membrane de 25 céramique. Le jus de filtration obtenu peut ensuite être concentré, par exemple par osmose inverse, évaporation ou précipitation, puis séché par exemple par lyophilisation ou atomisation. Optionnellement, l'extrait obtenu pourra ensuite être broyé de nouveau, afin 30 d'obtenir une poudre homogène en terme de granulométrie. Selon un de ces aspects, le procédé se déroule en partie à température ambiante. Par température ambiante, on entend une température comprise entre 5 et 25°C. Selon un autre de ces aspects, le procédé se déroule en partie à une température comprise entre 4 et 10°C, ceci afin d'éviter les développements microbiens. 35 Selon un mode de réalisation pour la mise en oeuvre du procédé tel qu'indiqué dans le cadre de la présente invention, l'extrait d'algues obtenu à l'étape f) du procédé 13 susmentionné est purifié, par exemple par ultrafiltration, en particulier sur une cassette d'ultrafiltration, notamment afin d'éliminer la partie minérale. Le procédé de préparation de l'extrait d'algues tel que décrit ci-dessus n'utilise pas de solvants, en particulier organiques. 5 De préférence, l'extrait d'algues de l'ordre des ulvales comprenant des polysaccharides polyanioniques sulfatés et non sulfatés dont le poids moléculaire est inférieur ou égal à 50 kDa présente un ou plusieurs des effets suivants: - il limite la dissémination bactérienne systémique, de préférence par un 10 mécanisme médié par les cellules NK ; - il augmente le nombre de cellules NK totales et le nombre de cellules NK produisant de l'INFy, de préférence sans augmentation du pourcentage de cellules NK INFy+, au lieu de l'infection ; - il n'augmente pas la proportion de cellules de l'immunité innée productrices 15 de cytokines pro-inflammatoires au lieu de l'infection (notamment CDs productrices d'IL- 12 et/ou macrophages producteurs de INFa et/ou NK ou LT producteurs d'INFy) ; - il n'a pas d'effet antibactérien direct, notamment sur les Staphyloccocus aureus sensibles à la méticilline ; - il n'induit pas d'augmentation de la production d'interféron y par les cellules 20 NK, par stimulation directe in vitro; - il n'induit pas d'augmentation de l'expression du marqueur KLRG1 les cellules NK, par stimulation directe in vitro ; - il n'induit pas d'augmentation du taux de la chimiokine CXCL-1 et/ou CXCL-2 au lieu de l'infection. 25 Composition pharmaceutique L'extrait d'algues de l'ordre des ulvales comprenant des polysaccharides polyanioniques sulfatés et non sulfatés dont le poids moléculaire est inférieur ou égal à 50 kDa est de préférence formulé dans une composition pharmaceutique ou un médicament. 30 Une composition pharmaceutique ou médicament pour la mise en oeuvre de l'invention comprend typiquement l'extrait d'algues de l'ordre des ulvales comprenant des polysaccharides polyanioniques sulfatés et non sulfatés dont le poids moléculaire est inférieur ou égal à 50 kDa, et un excipient pharmaceutiquement acceptable. Les excipients pharmaceutiquement acceptables utilisés pour la préparation d'un 35 médicament ou d'une composition pharmaceutique comprenant un extrait d'algues pour son utilisation selon l'invention sont choisis selon la forme pharmaceutique et le mode 14 d'administration souhaité, parmi les excipients habituels qui sont connus de l'homme du métier. Pour une administration orale, sublinguale, sous-cutanée, intramusculaire, intraveineuse, topique, locale, intrapéritonéale, intratrachéale, intranasale, transdermique ou 5 rectale, l'extrait d'algues tel que défini ci-dessus, peut être administré sous forme de doses unitaires, en mélange avec des excipients pharmaceutiques classiques. Les formes d'administration appropriées comprennent les formes par voie orale telles que les comprimés, les gélules molles ou dures, les poudres, les granules et les solutions ou suspensions orales, les formes d'administration sublinguale, buccale, 10 intratrachéale, intraoculaire, intranasale, par inhalation, les formes d'administration topique, parentérale telle que transdermique, intrapéritonéale, intratrachéale, sous-cutanée, intramusculaire ou intraveineuse, les formes d'administration rectale et les implants. Lorsqu'une composition solide sous forme de comprimés est préparée, l'ingrédient 15 actif principal peut être mélangé avec un véhicule pharmaceutique, tel que la gélatine, l'amidon, le lactose, le stéarate de magnésium, le talc, la gomme arabique ou analogues. Les comprimés peuvent également être enrobés avec du saccharose, un dérivé cellulosique, ou d'autres matières appropriées ou encore ils peuvent être traités de telle sorte qu'ils aient une activité prolongée ou retardée et qu'ils libèrent d'une façon continue 20 une quantité prédéterminée de principe actif. Une préparation sous forme de gélules peut par exemple être obtenue en mélangeant l'ingrédient actif avec un diluant et en versant le mélange obtenu dans des gélules molles ou dures. Dans un mode de réalisation, l'extrait d'algues, le médicament ou la composition 25 pharmaceutique pour son utilisation selon la présente invention est destiné à une administration orale. Dans un autre mode de réalisation, l'extrait d'algues, le médicament ou la composition pharmaceutique pour son utilisation selon la présente invention est destiné à une administration parentérale. Les médicaments ou compositions pharmaceutiques comprenant un extrait 30 d'algues pour son utilisation selon l'invention, peuvent aussi se présenter sous forme liquide, par exemple, sous forme de solutions, d'émulsions, de suspensions ou de sirops, et notamment sous une forme adaptée pour une administration orale ou intranasale, par exemple. Les supports liquides appropriés peuvent être, par exemple, de l'eau, des solvants organiques tels que le glycérol ou les glycols, de même que leurs mélanges, 35 dans des proportions variées, dans l'eau. 15 Une préparation sous forme de sirop ou d'élixir ou pour l'administration sous forme de gouttes peut également contenir l'ingrédient actif conjointement avec un édulcorant, acalorique par exemple, du méthylparabène et du propylparabène comme antiseptique, ainsi qu'un agent donnant du goût et un colorant approprié. 5 Les poudres ou les granules dispersibles dans l'eau peuvent par exemple contenir l'ingrédient actif en mélange avec des agents de dispersion ou des agents mouillants, ou des agents de mise en suspension, comme la polyvinylpyrrolidone, de même qu'avec des édulcorants ou des correcteurs de goût. En général, dans le cadre de la présente invention, la dose journalière de l'extrait 10 d'algues sera la dose efficace la plus faible de l'extrait d'algues capable de produire un effet prophylactique et/ou thérapeutique sur une immunodépression post-traumatique. Par « dose efficace », on désigne toute quantité d'une composition qui permet d'observer l'effet recherché, ici un effet immunostimulateur. Selon un de ses aspects, un extrait d'algues pour son utilisation selon l'invention 15 est utilisé dans une composition telle que susmentionnée pour une administration à une dose chez l'humain comprise entre 0,1 et 100 mg/kg, encore plus particulièrement entre 0,5 et 60 mg/kg, par exemple entre 1 et 20 mg/kg ou entre 5 et 30 mg/kg, ou à une dose chez l'animal comprise entre 1 et 200 mg/kg, plus particulièrement entre 1 et 100 mg/kg, encore plus particulièrement entre 2 et 45 mg/kg ou entre 10 et 60 mg/kg. 20 Traitement prophylactique ou thérapeutique de complications induites par une immunodépression post-traumatique Dans le contexte de l'invention, le terme "traiter" ou "traitement" signifie supprimer, alléger ou empêcher la progression d'un désordre ou d'un ou plusieurs symptômes liés à 25 ce désordre. Un traitement "prophylactique" ou "préventif" signifier prévenir l'apparition d'un tel désordre ou d'un ou plusieurs symptômes liés à ce désordre. Un sujet pour le traitement prophylactique ou thérapeutique selon l'invention est un animal, de préférence un mammifère, par exemple un rongeur, un canidé, un félin, un bovidé, un équidé, ou un primate. Un sujet est en particulier un humain, homme, femme 30 ou enfant. Le sujet présente une immunodépression post-traumatique. Généralement une immunodépression post-traumatique est consécutive à un ou plusieurs traumatismes sévères chez le sujet, tel qu'un traumatisme crânien. Selon un mode de réalisation, le sujet traumatisé sévère en question présente au 35 moins deux lésions traumatiques (polytraumatisme) parmi lesquelles au moins une lésion engage le pronostic vital. Le sujet est généralement hospitalisé, par exemple dans un 16 service hospitalier de réanimation. Le sujet peu plus particulièrement être placé sous ventilation artificielle, notamment avec intubation. Selon un mode de réalisation, le sujet traumatisé sévère présente un score de gravité des lésions (« Injury Severity Score » ou ISS) d'au moins 16. Pour les 5 traumatismes très sévères, l'ISS est d'au moins 25. Le calcul du score ISS prend en compte l'atteinte de plusieurs régions de l'organisme du patient (tête et cou; face; thorax; abdomen et pelvis; bassins et membres; peau et tissus sous cutanés). L'atteinte de chaque région est cotée de 1 à 6 en fonction de sa gravité (1 : atteinte mineure, 6 : atteinte critique). L'ISS est ensuite calculé par la mise au carré du score des trois régions 10 les plus atteintes (par exemple, si les côtes de chaque région sont les suivantes : tête 4, abdomen 3, thorax 2, autres régions 1, alors l'ISS vaudra 42+32+22 = 16+9+4 = 29 (Baker et al., 1974, J Trauma. 14 :187-196). Selon un mode de réalisation, le sujet traumatisé sévère présente un traumatisme crânien sévère défini par un score de Glasgow (CGS) inférieur à 8. La détermination du 15 CGS est une méthode qui permet d'apprécier la profondeur d'un coma par l'étude de la variabilité de 3 critères cliniques très précis qui sont : 1) l'ouverture des yeux (coté de 1 : absente à 4 : ouverture spontanée des yeux), 2) les capacités de motilité (faculté de se mouvoir), ou si l'on préfère la meilleure réponse motrice (cotée de 1 : absente à 6 : mouvements adaptés), et 3) la réponse aux questions posées (réponses verbales, cotée 20 de 1 : absente à 5 : réponse orientée). Le CGS est la somme des résultats obtenus aux trois critères cliniques cités ci-dessus. Il est donc au minimum de 3 et au maximum de 15 (Teasdale et al. 1974, Lancet 2: 81-84). L'immunodépression post-traumatique se caractérise de préférence par : a) une baisse du niveau de production ex vivo de cytokines pro-inflammatoires 25 induites par des leucocytes sanguins après stimulation par du LPS de bacilles Gram négatif, par exemple Escherichia coll, par rapport au niveau de production observé pour un individu sain ; et/ou b) une baisse du niveau d'expression de HLA-DR sur les cellules présentatrices des antigènes du patient, par rapport au niveau d'expression observé pour un individu 30 sain. La diminution observée du niveau de production de cytokines (exprimé par exemple en picogrammes/ml) s'entend versus des volontaires sains dont le niveau de production de cytokines représente la valeur 100%. Les cytokines sont typiquement mesurées dans des cultures de sang total stimulées par du LPS (d'Escherichia coli en 35 général). L'expression de HLA-DR s'exprime versus des volontaires sains, soit en nombre de molécules d'HLA-DR exprimées à la surface des cellules (MFI pour « mean 17 fluorescence intensity »), soit en pourcentage, la valeur 100% représentant le niveau d'expression de HLA-DR chez les volontaires sains. De manière particulière, si l'on raisonne en pourcentage, la baisse en a) et/ou b) ci-dessus est d'au moins 20% environ. Elle est de préférence d'au moins 25% environ, de préférence encore d'au moins 30, 35, 5 40, 45% environ, et de manière plus préférentielle d'au moins 50, 55, 60% environ, voire plus. De préférence encore, l'immunodépression post-traumatique observée chez le patient traumatisé sévère est telle que le niveau d'expression de HLA-DR sur les monocytes dudit dans les 24 heures suivant le ou les traumatismes (de JO à J1) est 10 diminué par rapport au niveau d'expression observé pour un individu sain. Cette diminution initiale peut d'ailleurs permettre, en pratique, de prédire le risque de complications septiques (ou infections secondaires). Ainsi, un bas niveau d'expression de HLA-DR sur les monocytes le premier jour suivant le ou les traumatismes sévères (J1), par exemple une diminution de 50%, est prédictif d'un risque élevé pour le patient de 15 contracter une infection secondaire. L'expression de HLA-DR s'exprime versus des volontaires sains, soit en nombre de molécules d'HLA-DR exprimées à la surface des cellules (MEI pour « mean fluorescence intensity »), soit en pourcentage, la valeur 100% représentant le niveau d'expression de HLA-DR chez les volontaires sains. En particulier, si l'on raisonne en pourcentage, la diminution du niveau d'expression de HLA-DR est d'au 20 moins 20% environ, de préférence d'au moins 25% environ, de préférence encore d'au moins 30, 35, 40, 45% environ, et de manière plus préférentielle d'au moins 50, 55, 60% environ, voire plus. Selon un mode de réalisation la prévention et/ou le traitement de 25 l'immunodépression post-traumatique conduit à la prévention et/ou traitement d'une complication septique de l'immunodépression post-traumatique. Les complications septiques (ou infections secondaires) de l'immunodépression post-traumatique sont plus particulièrement des infections nosocomiales, notamment bactériennes ou fongiques ou virales. En particulier, les infections nosocomiales en cause 30 sont sélectionnées dans le groupe constitué des pneumopathies, telles que les pneumonies acquises sous ventilation mécanique (PAVMs), des infections urinaires, des infections sur cathéters veineux centraux, des infections bactériennes cérébroméningées telles méningites empyèmes et abcès cérébraux. Plus particulièrement encore, les pneumopathies sont dues à des bactéries pathogènes choisies parmi les staphylocoques, 35 de préférence Staphylococcus aureus, de préférence encore Staphylococcus aureus sensible à la méticilline, Haemophilus sp., de préférence H. influenzas, les 18 pneumocoques, les entérobactéries, Pseudomonas sp., en particulier P. aeruginosa. Les bactéries à l'origine des pneumopathies peuvent également appartenir à d'autres genres ou espèces bactériens (par exemple, des bacilles Gram négatif et des coques Gram positif). De plus, elles peuvent être résistantes aux antibiotiques. S'agissant des infections 5 autres que les pneumopathies, les bactéries ou levures responsables peuvent être, par exemple, des bacilles Gram négatif (e.g., E. coli, Proteus mirabilis, Pseudomonas aeruginosa) et des coques Gram positif (e.g., S. aureus) pour les infections urinaires ; des bacilles Gram négatif (e.g., E. coli, P. mirabilis, P. aeruginosa), des coques Gram positif (e.g., S. aureus, des staphylocoques coagulase négatif) et des levures telles que Candida 10 sp. pour les infections sur cathéters centraux ; des bacilles Gram négatif (e.g., E. coli, P. mirabilis, P. aeruginosa) et des coques Gram positif (e.g., S. aureus, des staphylocoques coagulase négatif, Streptococcus pneumoniae) pour les infections bactériennes cérébroméningées. Selon un mode de réalisation le lieu de l'infection (ou foyer d'infection) est le 15 poumon. L'extrait d'algues, ou la composition ou le médicament le contenant, est de préférence administré, une ou plusieurs fois si nécessaire, dans une période d'au plus 1 mois environ, de préférence d'au plus 28 jours, à compter de l'admission des patients à l'hôpital, en particulier dans un service hospitalier de réanimation. En d'autres termes, les 20 complications septiques que l'on veut prévenir sont susceptibles de survenir (ou d'être contractées) pendant au plus 1 mois environ, de préférence au plus 28 jours, à compter de l'admission des patients à l'hôpital. Par exemple, on a pu constater que des complications septiques survenaient chez 40 à 50% des patients traumatisés sévères entre JO et J10, et chez 10 à 20% des patients en plus entre J10 et J28, soit 50 à 70 "Yo 25 des patients au total avaient contracté une infection secondaire (Osborn et al., 2004 Crit. Gare Med.;32(11):2234-40). En particulier, l'extrait d'algues, ou la composition ou le médicament le contenant est administré une ou plusieurs fois pendant la période d'intubation des patients. 30 Dans la présente demande, le terme "et/ou" est une conjonction grammaticale qui doit être interprétée comme englobant le fait qu'un ou plusieurs des cas qu'elle connecte peuvent se produire. Par exemple, l'expression "du mannose et/ou de l'arabinose " dans l'expression "lesdits polysaccharides comprennent du mannose et/ou de l'arabinose indique que les polysaccharides peuvent comprendre du mannose, ou de l'arabinose, ou 35 du mannose et de l'arabinose. 19 Dans l'ensemble de la présente demande, le terme "comprenant" doit être interprété comme englobant toutes les caractéristiques spécifiquement mentionnées, ainsi que des caractéristiques facultatives, additionnelles, non spécifiées. Tel qu'utilisé ici, l'utilisation du terme "comprenant" décrit également le mode de réalisation dans lequel 5 aucune caractéristique autre que les caractéristiques spécifiquement mentionnées n'est présente (c'est-à-dire "consistant en"). La présente invention sera illustrée plus en détail par les figures et exemples ci- dessous qui n'en limitent pas la portée. 10 FIGURES Figure 1 : Diagramme schématisant le protocole expérimental des analyses bactériologiques. Figure 2 : L'extrait d'algues n'a pas d'effet sur la perte de poids des souris 15 traumatisées et secondairement infectées. Les souris du groupe Sham (S) et Pneumonie seule (PN) ont reçu l'incision de 1cm sur le crâne sans TC. Les souris traumatisées et infectées, pour lesquelles la pneumonie était réalisée 24h après le TC, étaient réparties dans le groupe non traité (TC+PN) et traité par 6 injections du composé (toutes les 12h du TC jusqu'à l'euthanasie) (TC+FN+TX). La pneumonie était réalisée 24h 20 après le TC et les souris euthanasiées 48h après la pneumonie. Les résultats sont issus de 2 expériences indépendantes (chaque groupe n= 9). Les résultats de % de perte de poids sont donnés en moyennes ± écart type. * p 20% Apparence Normale Peu altérée Modérément Très altérée physique altérée (poils hérissés et dos bossu) Comportement (isolement) Normal Peu modifié Modérément Très modifié (isolement permanent du modifié reste du groupe) Tableau I : Points limites. Les souris étaient euthanasiées pour un score supérieur ou égal à 6. L'inoculum bactérien : La souche de SAMS ATCC 29213 (hémolysine positive, 5 leucocidine de Panton Valentine négative) a été utilisée pour toutes les expériences. La souche était mise en incubation en bouillon coeur-cervelle pendant 18h à 37°C puis était lavée 2 fois (1000g pendant 10 min à 20°), et enfin diluée dans du PBS stérile. Ensuite, l'inoculum était calibré par néphélométrie afin d'obtenir 7 MacFarland puis finalement concentré 5 fois afin d'atteindre une concentration entre 1 et 3 x109 UFC/mL. 10 Modèle de pneumonie : Une injection sous-cutanée de 0,1 mg/kg de buprénorphine était réalisée trente minutes avant la procédure puis les souris étaient anesthésiées par inhalation continue d'isoflurane (débit de gaz frais 0,8 L/min, fraction inhalée 3,5%). La pneumonie était ensuite induite par l'insertion intra-trachéale d'une canule de gavage de 24 gauges puis par l'injection de 75 pL d'inoculum. Les souris 15 étaient réparties en 4 groupes : Les souris Sham (S) non infectée non traumatisées, les souris infectées non traumatisées (PN), les souris traumatisées et infectées, non traitées (PN+TC) et les souris traumatisées infectées et traitées par 200pg du composé marin en intra-péritonéal toutes les 12 heures (PN+TC+TX). L'administration de l'extrait d'algues : L'extrait d'algues était administré aux doses 20 de 50 pg, 200 pg et 500 pg dans un volume total de 200 pL (complété par du PBS) par voie intrapéritonéale ou intratrachéale. Recherche d'un effet dose de l'extrait : L'extrait d'algues a été administré par voie intrapéritonéale 2 heures et 12 heures avant l'euthanasie aux doses de 50, 200 et 500 pL dans un volume total de 200pL de PBS. Afin de stimuler in situ les cellules de l'immunité 25 muqueuse pulmonaire, l'extrait d'algues a également été administré à la dose de 50 pg dans 75 pL par voie intra-trachéale selon la même procédure que pour l'inoculation bactérienne lors de la pneumonie. Les rates et poumons ont ensuite été prélevés puis les populations cellulaires analysées en cytométrie en flux après marquages intra-cellulaires des cytokines pro-inflammatoires (IL-12, TNFa, INF y). 26 Analyse par FACS des populations cellulaires : Les suspensions cellulaires pulmonaires et spléniques ont été obtenues par broyage mécanique manuel puis digestion par collagénase durant 30 minutes (rates) ou 45 minutes (poumons) puis passées au tamis (pores de 70pm). Après traitement par une solution de lyse des 5 hématies, les suspensions cellulaires obtenues étaient incubées 30 minutes à 4°C avec les anticorps couplés aux fluorochromes spécifiques. Pour les CDs : CD24-BV711 (M1/69, BD Horizon), CD11c-PeCy7 (NK18, Biolegende), MHC II-BV421(M5/114.15.2, Biolegend) ; Pour les macrophages : F4/80- Alexa647(BM8, Biolegende), CD11b-BV605 (M1/70, BD Horizon), CD11c-PeCy7(NK18, 10 Biolegend). Pour les cellules NK et lymphocytes T : NK1.1-BV421(PK136, BD Horizon), CD3-PE (145-2C11, eBioscience) et KLRG 1-APC (2F1, eBioscience). Les cellules ont été analysées sur l'appareil BD LSR II® puis l'ensemble des données ont ensuite été interprétées à l'aide du logiciel Flowjo Software® (TreeStar Inc, Ashland, OR). Le marquage des cytokines intra-cellulaires : Les souris ont été euthanasiées 12 15 heures après l'instillation trachéale de SASM créant la pneumonie. Pour le marquage intracellulaire des cytokines dans les DCs, les macrophages et les lymphocytes, les cellules ont été incubées 5 heures dans un milieu comprenant du RPMI et du Golgi Plugh (BD Bioscience) afin de bloquer l'exocytose, lavées deux fois puis marquées selon les marqueurs membranaires (cf ci-dessus). La fixation et la perméabilisation ont été 20 effectuées selon les recommandations du fabricant (BD Cytofix/Cytoperm kit, BD Bioscience). Les cellules ont été incubées pendant une nuit à 4°C dans du PermWash avec les anticorps anti IL12-PE (C15.6, BD Pharmingen), INF y-Alexa488 (XMG1.2, eBioscience) et TNFa-PE (MP6-XT22, BD Pharmingen) puis les cellules ont été lavées deux fois et analysées par cytométrie en flux. 25 L'évaluation de la croissance et de la dissémination bactérienne : Les poumons et les rates ont été pesés puis broyés mécaniquement dans des conditions stériles. Les homogénats d'organes ont été soumis à plusieurs dilutions (de 10-2 à 10-6 selon les conditions) et ont été incubés à 37 ° C sur un milbu spécifique (Chapman) afin d'éviter la croissance d'autres bactéries. Après une incubation de 24h, les colonies ont été 30 dénombrées et les résultats ont été exprimés en logio d'UFC par gramme d'organe. La cinétique de bactéricidie : la cinétique de bactéricidie en milieu liquide a été réalisé à partir d'un inoculum de SAMS ATCC 29213 à 0,5 de MacFarland (données néphélométriques) dilué 5 fois dans un bouillon Mueller Hinton (inoculum de départ =6x106 UFC/mL). Le témoin a été comparé à plusieurs gammes de concentrations du 35 composé sulfaté marin (50 pg/mL, 200 pg/mL, 500 pg/mL). 50 pL ont ensuite été 27 ensemencés à HO, H3, H6 et H24 sur gélose TS puis incubé à 37° pendant 24h. Les colonies ont été dénombrées et les résultats exprimés en loglo d'UFC/mL. Détermination du niveau d'expression des chimiokines pulmonaires et spléniques par méthode Luminex. Après prélèvements des poumons et des rates, ces derniers ont 5 été homogénéisés mécaniquement à 4°C en présence de tampon de lyse (1xPBS, pH 7,4/ 0,1% triton X-100) contentant 1mM de protease inhibitor cocktail (Sigma, l'Isle D'Abeau Chesnes, France). Les homogénats ont ensuite été centrifugés à 12 000g pendant 20 minutes à 4° puis le surnageant a été prélevé puis stocké à -80°C jusqu'à l'analyse. Les concentrations des différentes chimiokines ont été réalisé par la plateforme 10 CIMNA (Centre D'Immunomonitorage Nantes Atlantique) par méthode Luminex ® après marque spécifiques des différentes chimiokines : CCL19/MIP-3 beta (BR19), CCL2/MCP1/JE (BR18), CCL20/MIP-3 alpha (BR48), CCL21/6Ckine (BR72), CCL3/MIP-1 alpha (BR46), CCL4/MIP-1 beta (BR51), CCL8/MCP-2 (BR38), CXCL1/KC (BR13), CXCL10/IP10 (BR37), CXCL2/MIP-2 (BR20). 15 Tri magnétique des cellules NK : Les suspensions cellulaires pulmonaires ont été obtenues selon le protocole utilisé pour l'analyse FACS. Les cellules ont été comptées (environ 2.107par poumon) puis centrifugées à 300g pendant 10 minutes. Les cellules ont été suspendues dans 40pL de FACS Buffer pour 10' cellules puis marquées par 104 de NK Cell Biotin- Antibody Cocktail (Miltenyi Biotec®, Germany) et incubée 5 minutes à 4°C. 20 Après une nouvelle centrifugation à 300g pendant 10 minutes, les cellules ont été incubées 10 minutes à 4°C avec 20 pL d'Anti-Biotin MicroBeads (Miltenyi Biotec®, Germany) pour 107 cellules. Enfin la séparation magnétique a été réalisée selon les recommandations du fabricant (Miltenyi Biotec, Germany). Chaque groupe (naïve et TC) était composé de 6 souris puis les poumons ont été broyés deux par deux afin d'atteindre 25 au minimum 10 000 cellules NK par puit (pour un total d'environ 20 millions de cellules par poumons de souris). La pureté en cellules NK était supérieure à 90%. Stimulation in vitro des cellules NK : Les cellules NK isolées après tri magnétique ont été stimulées in vitro durant 5 heures dans l'étuve en CO2 à 37°C et selon 3 conditions différentes : Contrôle (RPMI + SVF + IL-2 à la concentration de 3000 Ul/mL), 30 Algues (contrôle + Algue à 500pg/mL) et PMA-lonomycine (contrôle + PMA à 5Ong/mL et lonomycine (1 pg/mL). Les cellules étaient également stimulées 4 heures sur les 5 avec Golgi Plugh (BD Bioscience) selon les recommandations du fabricant. La sécrétion d'IFNg, l'expression membranaire de KLRG 1 et le nombre de cellules NK ont ensuite été analysées par FACS. 35 Déplétion in vivo des cellules NK : Les cellules NK était déplétées in vivo par injections IV (rétro-orbitaires) de 10pL de LEAF purified anti mouse NK1.1 (clone PK136/ 28 cat# 108712 - 1mg/mL) (Biolegend) dans 190 pL de PBS. Les injections étaient réalisées 2h et 48h après le traumatisme crânien. L'efficacité de la déplétion de NK était évaluée en FACS par le compte du nombre de cellules NK pulmonaires : NK1.1-BV421(PK136, BD Horizon), CD3-PE (145-2C11, eBioscience). 5 Statistiques : Les analyses statistiques ont été réalisées avec le logiciel GraphPadPrism 6.00 (San Diego, CA, United States). Les variables continues non paramétriques ont été exprimées en médianes +/- écarts interquartiles et analysées par un test de Kruskall-Wallis avec utilisation post-hoc du test de Dunn. Les analyses des populations en pourcentage ont été réalisées par un test de Fisher bilatéral. 10 Exemple 3 : Effets cliniques et bactériologiques Les souris étaient réparties en 4 groupes : Sham (S), Pneumonie seule (PN), Traumatisme crânien + Pneumonie (TC+PN), et les souris traumatisées et infectées, traitées toutes les 12 h par injection intra-péritonéale (IP) de 200pg du composé 15 (TC+PN+TX) en commençant 2h après traumatisme et jusqu'à l'euthanasie. Les souris des groupes S et PN recevaient une incision de 1 cm du haut du crâne sans le traumatisme. La pneumonie était induite 24 heures après le traumatisme crânien. L'euthanasie survenait 24h à 48h après l'induction de la pneumonie selon les critères étudiés (Figure 1). 20 L'extrait d'algues [n'a pas d'effet sur la perte de poids des souris traumatisées et secondairement infectées La pneumonie à SASM induit une perte de poids transitoire atteignant environ 12% du poids du corps à 24h heures. Le traumatisme crânien augmente la perte de poids à la phase initiale de l'infection mais ne modifie pas la récupération à partir de J+3 comparé 25 aux souris non traumatisées. Le traitement n'a pas d'effet sur la perte de poids des souris traumatisées et secondairement infectées (Figure 2). L'extrait d'algues limite la dissémination bactérienne chez les souris traumatisées 48h après l'induction d'une pneumonie à SAMS Les charges bactériennes pulmonaires sont similaires dans tous les groupes 30 infectés à 24h (PN, TC+PN, TC+PN+TX) (Figure 3A) ainsi qu'à 48h (Figure 3B) de l'induction de la pneumonie. Dès la 24eme heure suivant l'infection pulmonaire, toutes les souris ayant subi une pneumonie étaient bactériémiques à SAMS (charge bactérienne splénique> 2 log). Les souris traumatisées ne présentent pas de dissémination bactérienne 35 supérieure après une pneumonie comparée aux souris non traumatisées (PN vs TC+PN) (Figure 3C et 3D). 29 Le traitement n'a aucun effet sur la bactériémie à 24h de l'infection (Figure 3C) mais à la 48é" heure de l'infection, le Staphyloccocus aureus était mis en évidence chez 22% des souris du groupe traité (TC+PN+TX) contre 100% dans le groupe subissant la pneumonie post-traumatique non traité (TC+PN). Les souris du groupe traité par l'extrait 5 d'algues présentent donc des charges bactériennes spléniques inférieures à 48h de l'induction de la pneumonie (Fig 3D). Cet effet semble être en relation avec la fréquence d'administration car l'injection unique de l'extrait d'algues induit une diminution de la bactériémie inférieure à celle observée en cas d'injections multiples (résultats non montrés). 10 Bien qu'il n'existe pas de différence de charges bactériennes entre le groupe pneumonie seule (PN) et le groupe traumatisé infecté (TC+PN) (Figure 3C et 3D), le traitement adjuvant (injecté avant l'infection) diminue la dissémination bactérienne au cours des infections post-traumatiques (Figure 3D), mais pas en l'absence de traumatisme (Figure 3E). Ce résultat suggère que l'extrait d'algues améliore la réponse 15 pulmonaire à une infection bactérienne en cas d'immunodépression post-traumatique, mais n'a pas ou peu d'effet au cours d'une pneumonie sur animaux sains. L'extrait d'algues n'a pas d'activité spécifique anti-SAMS in-vitro Au cours d'une pneumonie post-traumatique, le traitement diminue la durée de la dissémination systémique de l'infection bactérienne (Figure 3). Cet effet thérapeutique 20 pourrait être lié soit à un effet antibactérien direct de l'extrait d'algues, soit à un effet sur l'immunité de l'hôte. Pour étudier les éventuelles propriétés antibactériennes directes, nous avons évalué l'effet de l'extrait d'algues sur la souche de SAMS ATCC 29213. Pour cela nous avons évalué in vitro les effets de l'extrait d'algues sur la croissance du SAMS par la méthode des cinétiques de bactéricidie en milieu liquide. Les résultats montrent que 25 de l'extrait d'algues n'a aucun effet anti-SAMS direct quelle que soit la concentration testée, y compris à des doses supra-thérapeutiques (50, 200 et 500 pg/mL) (Figure 4). Exemple 4 : Recherche d'un effet immunostimulant de l'extrait d'algues chez la souris naïve 30 Les effets cliniques de l'extrait d'algues sur la dissémination bactérienne (Figure 3D), son absence d'effet anti-SAMS in vitro (Figure 4) ainsi que son absence d'action clinique en absence de traumatisme (Figures 3E et F) ont conduit à rechercher un effet immunostimulant du polysaccharide. Une relation dose-effet de l'extrait sur la sécrétion de cytokines pro-inflammatoires (IL-12 par les CDs, TNFa par les macrophages et INF y par 35 les NK et LT) pulmonaires et spléniques a premièrement été recherchée chez la souris naïve. L'évaluation de la production cytokinique a été réalisée en cytométrie en flux après 30 marquage intracellulaire. Pour cela l'extrait a été injecté à plusieurs temps (2h et 12 heures avant euthanasie) en intrapéritonéal. L'extrait a également été administré en intratrachéal afin d'essayer d'induire une stimulation directe des cellules de l'immunité muqueuse pulmonaire. 5 L'administration infra-péritonéale de l'extrait d'algues 2 heures et 12 heures avant l'euthanasie n'induit pas d'augmentation de la production de cytokines pro-inflammatoires (IL-12, TNFa, INF y) chez la souris naïve L'extrait d'algues n'induit pas d'augmentation du pourcentage CDs pulmonaires produisant de l'IL-12 (Figure 5A), quelle que soit la dose utilisée. Il n'augmente pas la 10 proportion de macrophages produisant du TNFa (Figure 5B) ni d'augmentation du nombre de NK (Figure 5C) ou de Ur INFy + dans le tissu pulmonaire. Les nombres totaux de CDs, NK et LT pulmonaires n'étaient pas modifiés par l'injection de l'extrait d'algues chez les souris naïves. Les effets d'une administration de l'extrait d'algues ont également été évalués 12h 15 après l'injection intra-péritonéale du composé. Les mêmes posologies ont été étudiées. À 12h, on ne notait aucune différence pour la production de cytokines pro-inflammatoires pulmonaires ainsi que pour le nombre de cellules (données non montrées). L'administration intra-trachéale de l'extrait d'algues 2 heures et 12 heures avant l'euthanasie n'induit pas d'augmentation de la production de cytokines pro-inflammatoires 20 (IL-12, TNFa, INF y) chez la souris naïve La voie intra-péritonéale ayant peu d'effets chez les souris naïves sur les cellules immunitaires étudiées, l'effet d'un traitement administré directement par voie intratrachéale a été testé. La production de cytokines a été évaluée 2h (T (H-2)) et 12h (T (overnight)) après l'instillation intra-trachéale de l'extrait d'algues. Aucune différence de 25 sécrétion n'a été mise en évidence comparée aux souris témoins (Naïves) et à l'administration de LPS, à la dose de 50pg, 2 heures avant l'euthanasie (LPS (H-2)) (Figure 6). Exemple 5 : Recherche de l'effet immunostimulant de l'extrait d'algues dans 30 un modèle d'immunodépression post-traumatique L'absence d'effet immunostimulant de l'extrait d'algues chez la souris naïve a conduit à poursuivre les recherches dans un modèle de souris traumatisées et secondairement infectées, reproduisant le scénario observé en clinique. L'effet immunostimulant de l'extrait d'algues a ainsi été évalué dans un modèle 35 d'immunodépression post-traumatique. Le traumatisme crânien était réalisé chez des souris mâles C57/BI6, puis l'extrait d'algues était administré par voie intra-péritonéale à la 31 dose de 200 pg dès deux heures après le traumatisme puis toutes les 12 heures jusqu'à l'euthanasie (3 injections au total). La pneumonie était induite 24 heures après le traumatisme crânien puis les souris étaient euthanasiées 12 heures après la pneumonie. Les souris étaient réparties en 4 groupes : Sham (S), pneumonie seule (PN), traumatisme 5 crânien + pneumonie non traitées (TC+PN) et traumatisme crânien + pneumonie traitées par l'extrait d'algues (TC+PN+TX) (Figure 7). L'administration de l'extrait d'algues n'augmente pas le pourcentage de cellules de l'immunité innée pulmonaires produisant des cytokines pro-inflammatoires Dans un modèle de pneumonie post-traumatique, l'administration intra-péritonéale 10 de l'extrait d'algues n'augmente pas la proportion de CDs productrices d'IL-12 (Figure 8A), de macrophages producteurs de TNFa (Figure 8B) ni de NK ou LT producteurs d' INFy (Figure 8C). L'administration de l'extrait d'algues augmente le nombre de cellules NK productrices d'interféron y 15 Le traumatisme crânien provoque, au niveau du poumon, une diminution du nombre total de cellules NK (Figure 9A), ainsi qu'une diminution des cellules NK produisant de l'interféron y (p REVENDICATIONS1.- Extrait d'algues de l'ordre des ulvales comprenant des polysaccharides polyanioniques sulfatés et non sulfatés dont le poids moléculaire est inférieur ou égal à 50 kDa, pour son utilisation pour la prévention et/ou le traitement d'une complication induite par une immunodépression post-traumatique. 2.- Extrait d'algues pour l'utilisation selon la revendication 1, pour la prévention et/ou traitement d'une complication septique de l'immunodépression post-traumatique. 3.- Extrait d'algues pour l'utilisation selon la revendication 2, où ladite complication septique est une infection nosocomiale, notamment une infection nosocomiale sélectionnées dans le groupe constitué des pneumopathies, telles que les pneumonies acquises sous ventilation mécanique (PAVMs), des infections urinaires, des infections sur cathéters veineux centraux, des infections bactériennes cérébroméningées telles méningites empyèmes et abcès cérébraux. 4.- Extrait d'algues pour l'utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, où ladite immunodépression post-traumatique est consécutive à un ou plusieurs traumatismes sévères, en particulier un traumatisme crânien sévère. 5.- Extrait d'algues pour l'utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, où ledit extrait d'algues est un extrait d'algues vertes de type Ulva. 6.- Extrait d'algues pour l'utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, où lesdits polysaccharides polyanioniques sulfatés et non sulfatés de poids moléculaire inférieur ou égal à 50 kDa ont un poids moléculaire inférieur à 15 kDa, et de préférence supérieur à 500 Da. 7.- Extrait d'algues pour l'utilisation selon la revendication 6, où l'extrait d'algues ne comprend pas de polysaccharides polyanioniques sulfatés ou non sulfatés dont le poids moléculaire est supérieur à 15 kDa. 8.- Extrait d'algues pour l'utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 7, où l'extrait d'algue comprend : - du mannose ; et/ou 37 - de l'arabinose ; et/ou - du galactose; et/ou - du glucose; et/ou - du rhamnose; et/ou 5 - du xylose; et/ou - de l'acide glucuronique. 9.- Extrait d'algues pour l'utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 8, où l'extrait d'algue comprend : 10 de 10 à 50 % de carbone ; de 1 à 10% d'hydrogène ; de 1 à 5 % d'azote ; de 20 à 50 % d'oxygène ; et de 1 à 15 % de soufre ; 15 en pourcentage massique de la matière sèche totale de l'extrait d'algues. 10.- Extrait d'algues pour l'utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 9, où l'extrait d'algues est obtenu par un procédé de préparation dans lequel: a) les algues sont lavées et dessablées ; 20 b) lesdites algues sont broyées ; c) la phase solide du broyat est séparée de sa phase liquide ; d) ladite phase liquide est clarifiée ; e) le jus obtenu à l'étape d) est ultrafiltré sur une membrane de 50 kDa ou moins; et f) le jus de filtration obtenu à l'étape e) est concentré puis séché. 25