Brevet FR3066022A1 — publié le 20181109

Dispositif et procÃ©dÃ© de mesure de l'absorbance d'une solution comportant des microalgues en suspension DOMAINE TECHNIQUE [0001] La prÃ©sente invention concerne notamment un dispositif et un procÃ©dÃ© de mesure de l'absorbance d'une solution comportant des microalgues en suspension, de maniÃ¨re, par exemple, Ã suivre l'Ã©volution en temps rÃ©el d'une culture de ces microalgues. ÃTAT DE L'ART [0002] La culture de microalgues a connu un important dÃ©veloppement ces trente derniÃ¨res annÃ©es. Initialement utilisÃ©es pour la nutrition animale en aquaculture, les microalgues sont aujourd'hui exploitÃ©es dans de nombreux secteurs d'activitÃ© tels que l'Ã©nergie, la cosmÃ©tique et la pharmacie. Leurs vertus nutritives ainsi que le faible coÃ»t de leur culture font des microalgues, telles que la spiruline ou chlorella, une ressource alimentaire d'intÃ©rÃªt tant pour l'alimentation humaine que animale. Selon l'organisation des Nations Unies pour l'alimentation et l'agriculture (FAO), la spiruline pourrait mÃªme participer Ã la lutte contre la malnutrition. [0003] Les microalgues sont en gÃ©nÃ©ral produites dans un rÃ©acteur de culture du type photobiorÃ©acteur, qui comprend un milieu propice Ã leur culture. Les microalgues sont soumises, dans le rÃ©acteur, Ã un rayonnement lumineux qui favorise leur multiplication, et Ã une agitation par bullage. [0004] Dans tout dispositif de mise en culture de microalgues en solution, il est avantageux de pouvoir suivre l'Ã©volution des microalgues cultivÃ©es de faÃ§on continue au cours du temps sans avoir Ã extraire un Ã©chantillon du dispositif. De maniÃ¨re prÃ©fÃ©rentielle, les mesures 3066022 2 sont rÃ©alisÃ©es in situ, c'est-Ã -dire qu'elles sont rÃ©alisÃ©es au sein mÃªme du milieu de culture, sans introduction d'outillage extÃ©rieur. Les paramÃ¨tres suivants sont particuliÃ¨rement importants Ã suivre (par ordre de prioritÃ©) : 1. la concentration en microalgues de la solution, 5 2. la santÃ© de la culture, 3. la qualitÃ© nutritive des microalgues (qui peut Ãªtre dÃ©duite en analysant le contenu pigmentaire des microalgues). Pour rÃ©aliser des mesures de paramÃ¨tres in situ, le dispositif doit pouvoir Ãªtre immergeable dans la solution de microalgues, sur des gammes de pH 10 (par exemple, entre 4 et 12) et tempÃ©ratures (par exemple, entre 10 et 40Â°C) variables. Le dispositif doit par ailleurs Ãªtre aux normes alimentaires puisqu'il est directement mis en contact avec un milieu destinÃ© Ã Ãªtre consommÃ© par l'humain et doit pouvoir s'intÃ©grer Ã un systÃ¨me de culture et/ou de rÃ©colte et/ou de suivi de l'Ã©volution d'une culture de microalgues. 15 [0005] Il est possible de dÃ©terminer tout ou partie des paramÃ¨tres prÃ©citÃ©s via une analyse de l'absorbance de la solution de microalgues Ã diffÃ©rentes longueurs d'ondes. En effet, de maniÃ¨re connue en soi, les pigments contenus dans les microalgues absorbent de la lumiÃ¨re afin d'activer les dispositifs photosynthÃ©tiques qui permettent aux 20 microalgues de se dÃ©velopper. Ainsi, dans un volume donnÃ© de culture, et dans le cas classique d'un pool pigmentaire constant, plus il y a de microalgues, plus il y a de pigments, et plus la lumiÃ¨re qui le traverse est attÃ©nuÃ©e. [0006] Classiquement, en biologie, on appelle Â« pool Â» un 25 ensemble d'entitÃ©s fonctionnelles mobilisables par une cellule (on parle par exemple d'un Â« pool de canaux ioniques Â» ou d'un Â« pool de ribosomes Â»). Les microalgues telles que la spiruline Ã©tant des algues unicellulaires (formÃ©es d'une seule cellule), l'expression Â« pool pigmentaire Â» dÃ©signe ainsi l'ensemble de leurs pigments. 3066022 3 [0007] Le principe optique utilisÃ© pour cette analyse d'absorbance est proche du modÃ¨le de Beer-Lambert, Ã la diffÃ©rence prÃ¨s, qu'une culture de microalgues en solution ne peut pas Ãªtre considÃ©rÃ©e exactement comme un milieu continu absorbant mais plutÃ´t comme un 5 milieu particulaire du fait de la taille des microalgues. Afin de tenir compte de la caractÃ©ristique particulaire du milieu une absorbance moyennÃ©e sur le temps peut Ãªtre Ã©valuÃ©e. [0008] Le principe de Beer-Lambert s'exprime classiquement par deux Ã©quations : 10 1) / = /0 10-Eic 2) AÃ = -logio-Io = E -Ã - C dans lesquelles : /0 est l'intensitÃ© lumineuse Ã©mise par une source de lumiÃ¨re initiale - I est l'intensitÃ© lumineuse transmise, 15 - - est la transmittance de la solution traversÃ©e par la lumiÃ¨re Ã©mise (sans unitÃ©), - A est l'absorbance ou densitÃ© optique (DO) Ã une longueur d'onde Ã donnÃ©e (sans unitÃ©) de la solution traversÃ©e, - Â£ est le coefficient d'extinction molaire (L.mo1-1.cm-1) qui dÃ©pend de la 20 longueur d'onde, de la nature chimique, et de la tempÃ©rature de la solution traversÃ©e par la lumiÃ¨re, - Ã® est la longueur du trajet optique (chemin parcouru par la lumiÃ¨re Ã©mise) dans la solution traversÃ©e, classiquement, elle correspond Ã l'Ã©paisseur de la cuvette de mesure utilisÃ©e (cm), 25 - Cest la concentration molaire de la solution traversÃ©e (moll-1). Ces Ã©quations sont classiquement, et de maniÃ¨re trÃ¨s frÃ©quente, utilisÃ©es notamment en chimie analytique. En effet, si Ã® et c sont connus, la concentration d'une substance prÃ©sente dans la solution traversÃ©e par la lumiÃ¨re peut Ãªtre dÃ©duite de la quantitÃ© de lumiÃ¨re transmise par celle-ci. 3066022 4 [0009] L'approche expÃ©rimentale effectuÃ©e par la demanderesse a montrÃ© qu'une approche statistique permet de relier la concentration en microalgues Ã l'absorbance de la lumiÃ¨re qui traverse l'Ã©chantillon observÃ© et ce malgrÃ© le caractÃ¨re particulaire du milieu. 5 [0010] La demanderesse propose ainsi une solution simple, efficace et Ã©conomique pour mesurer l'absorbance d'une solution de microalgues. EXPOSÃ DE L'INVENTION [0011] L'invention propose Ã cet effet un dispositif de 10 mesure de l'absorbance d'une solution comportant des microalgues en suspension, ce dispositif comportant : - un boÃ®tier Ã©tanche configurÃ© pour Ãªtre immergÃ© au moins en partie dans la solution et comprenant un canal de passage d'une partie de la solution, 15 - au moins deux sources lumineuses configurÃ©es pour Ã©mettre des rayonnements lumineux Ã des longueurs d'ondes diffÃ©rentes et disposÃ©es sur un premier cÃ´tÃ© du canal de passage, et - au moins un capteur lumineux disposÃ© sur un second cÃ´tÃ© opposÃ© du canal de passage, et configurÃ© pour dÃ©tecter les rayonnements lumineux 20 Ã©mis par lesdites au moins deux sources lumineuses aprÃ¨s qu'ils aient traversÃ© la partie de la solution prÃ©sente dans le canal de passage. [0012] De fait que le dispositif soit immergÃ© dans la solution de microalgues dont on veut mesurer l'absorbance, l'invention permet une mesure de l'absorbance de la solution de microalgues in situ, sans 25 immersion d'outillage extÃ©rieur dans cette solution de microalgues. Ceci permet une prise de mesure simple et sans risques de contamination de la solution de microalgues. Le dispositif est par ailleurs peu encombrant et peut ainsi Ãªtre utilisÃ© par un grand nombre de personnes, mÃªme dans des endroits confinÃ©s tels qu'une cuisine, par exemple. 3066022 5 [0013] Le dispositif selon l'invention peut comprendre une ou plusieurs des caractÃ©ristiques suivantes, prises isolÃ©ment les unes des autres ou en combinaison les unes avec les autres : - les sources lumineuses sont des diodes Ã©lectroluminescentes, 5 - le nombre de sources lumineuses est supÃ©rieur Ã deux, et est par exemple de cinq, les sources lumineuses Ã©tant toutes configurÃ©es pour Ã©mettre des rayonnements lumineux Ã des longueurs d'ondes diffÃ©rentes, - les sources lumineuses sont configurÃ©es pour Ã©mettre des rayonnements lumineux dont les longueur d'ondes sont choisies parmi : 10 400 nm, 480 nm, 620 nm, 680 nm et 800 nm, - le boÃ®tier comprend un corps Ã©vidÃ© comportant une cavitÃ© interne de logement des sources lumineuses et du capteur, - le corps Ã©vidÃ© prÃ©sente une forme gÃ©nÃ©rale en U dont les ailes dÃ©finissent entre elles le canal de passage, 15 - le corps est rÃ©alisÃ© dans un matÃ©riau opaque Ã la lumiÃ¨re ambiante, - le canal de passage a une forme allongÃ©e rectiligne et est dÃ©bouchant Ã ses deux extrÃ©mitÃ©s axiales, - le canal de passage prÃ©sente une forme parallÃ©lÃ©pipÃ©dique allongÃ©e dÃ©finie par seulement trois parois, 20 - le boÃ®tier comprend deux parois planes sensiblement parallÃ¨les et transparentes auxdites longueurs d'onde, ces parois dÃ©finissant au moins une partie dudit canal et Ã©tant disposÃ©es entre lesdits cÃ´tÃ©s, - les sources lumineuses sont fixÃ©es sur un support unique disposÃ© au niveau dudit premier cÃ´tÃ©, ledit support Ã©tant configurÃ© de maniÃ¨re Ã faire 25 converger les rayonnements lumineux, - le dispositif comprend au moins une carte Ã©lectronique reliÃ©e aux sources lumineuses et au capteur et disposÃ©e au moins en partie dans le boÃ®tier, - le boÃ®tier a une forme gÃ©nÃ©rale extÃ©rieure cylindrique dont l'axe de rÃ©volution est sensiblement perpendiculaire Ã un axe d'allongement du canal de passage. 3066022 6 [0014] L'invention porte Ã©galement sur un rÃ©acteur de culture de microalgues en suspension dans une solution, comportant au moins un dispositif tel que dÃ©crit ci-dessus, destinÃ© Ã Ãªtre immergÃ© dans ladite solution, pouvant comporter en outre un capteur de tempÃ©rature 5 destinÃ© Ã Ãªtre immergÃ© dans ladite solution. [0015] L'invention porte aussi sur un procÃ©dÃ© de mesure de l'absorbance d'une solution comportant des microalgues en solution, au moyen d'un dispositif selon l'une des caractÃ©ristiques prÃ©cÃ©dentes, caractÃ©risÃ© en ce qu'il comprend une Ã©tape consistant Ã Ã©mettre 10 successivement au moins deux rayonnements lumineux de longueurs d'ondes diffÃ©rentes au moyens des sources lumineuses, et Ã dÃ©tecter lesdits rayonnements au moyen du capteur lumineux. [0016] Le procÃ©dÃ© selon l'invention peut comprendre une ou plusieurs des caractÃ©ristiques ou Ã©tapes suivantes, prises isolÃ©ment les 15 unes des autres ou en combinaison les unes avec les autres : - plus de deux rayonnements de longueurs d'ondes diffÃ©rentes sont Ã©mis successivement, - les longueurs d'onde desdits rayonnements sont choisies parmi : 400 nm, 480 nm, 620 nm, 680 nm et 800 nm, 20 - le procÃ©dÃ© comprend une Ã©tape de calcul de l'absorbance de la solution Ã partir d'un paramÃ¨tre mesurÃ© par le capteur, - le procÃ©dÃ© comprend une Ã©tape de calcul d'au moins un rapport entre l'absorbance de la solution Ã une premiÃ¨re longueur d'onde et l'absorbance de la solution Ã une seconde longueur d'onde, de maniÃ¨re Ã dÃ©terminer 25 l'Ã©tat de santÃ© des microalgues de la solution Ã partir dudit au moins un rapport calculÃ©, - un premier rapport est calculÃ© Ã partir des absorbances Ã des longueurs d'onde de 400 et 680nm respectivement, - l'Ã©tat de santÃ© des microalgues est dÃ©terminÃ© Ã partir du premier 30 rapport calculÃ©, 3066022 7 - un second rapport est calculÃ© Ã partir des absorbances Ã des longueurs d'ondes de 680 et 800 nm respectivement, - la concentration en microalgues dans la solution et/ou la prÃ©sence de bactÃ©ries dans la solution est/sont dÃ©terminÃ©e(s) Ã partir du second rapport 5 calculÃ©, - le procÃ©dÃ© comprend une Ã©tape de surveillance dans le temps du premier et/ou du second rapport calculÃ©, et une Ã©tape de dÃ©tection, voire d'alerte, lorsque le premier et/ou second rapport calculÃ© augmente dans le temps. 10 [0017] Ainsi, dans un cas particulier, l'absorbance mesurÃ©e par le capteur peut Ãªtre utilisÃ©e pour caractÃ©riser de maniÃ¨re continue, trÃ¨s fine et Ã trÃ¨s bas coÃ»t, la concentration en microalgues dans une solution de microalgues ainsi qu'un paramÃ¨tre caractÃ©risant la santÃ© globale des microalgues de la solution. 15 DESCRIPTION DES FIGURES [0018] L'invention sera mieux comprise et d'autres dÃ©tails, caractÃ©ristiques et avantages de l'invention apparaÃ®tront Ã la lecture de la description suivante faite Ã titre d'exemple non limitatif, et en rÃ©fÃ©rence aux dessins annexÃ©s dans lesquels : 20 - la figure la est un graphique prÃ©sentant l'Ã©volution du rapport de densitÃ© optique D0400/680 d'une culture de microalgues en fonction du temps, - la figure lb est un schÃ©ma simplifiÃ© d'un principe de fonctionnement d'un dispositif selon l'invention, 25 - la figure 2 est une vue schÃ©matique d'un dispositif selon l'invention immergÃ© dans un rÃ©acteur de culture d'une solution de microalgues, - la figure 3a est une vue en perspective d'un mode de rÃ©alisation d'un dispositif selon l'invention, - la figure 3b est une vue Ã une plus grande Ã©chelle et avec arrachement 30 partiel du dispositif de la figure 3a, 3066022 8 - la figure 4 est une vue en coupe transversale du dispositif de la figure 3a, et - la figure 5a est une vue en perspective d'un support unique selon l'invention, 5 - la figure 5b est une vue schÃ©matique de l'orientation des sources lumineuses de l'invention lorsqu'elles sont fixÃ©es sur le support unique de la figure 5a. DESCRIPTION DÃTAILLÃE 10 [0019] Les observations effectuÃ©es en laboratoire par la demanderesse montrent qu'indÃ©pendamment de la concentration, une culture de microalgues en bonne santÃ© prÃ©sente un rapport de DO (densitÃ© optique) Ã une longueur d'ondes des UV proches (par exemple Ã 400 nm) avec celle Ã une longueur d'ondes de 680 nm relativement constant. Au 15 contraire, lorsque la santÃ© de la culture de microalgues se dÃ©tÃ©riore, ce rapport augmente fortement. En se basant sur ce constat, il est possible, avec, par exemple, deux sources lumineuses (par exemple des LED Ã©mettant des rayonnements Ã des longueurs d'ondes respectivement de 680 et 400nm), de vÃ©rifier si la culture est en bonne ou mauvaise santÃ©. 20 Ceci est illustrÃ© en figure la de la prÃ©sente demande, dans laquelle l'abscisse indique une date de prise de mesure et l'ordonnÃ©e indique le rapport de D0400/680 des deux cultures aux moments considÃ©rÃ©s. La courbe 1 est celle d'une culture de microalgues dont la santÃ© se dÃ©grade et la courbe 2 correspond Ã une culture de microalgues en bonne santÃ©. 25 [0020] Comme visible sur a figure 1 b, le principe du dispositif 10 selon l'invention se base sur la prÃ©sence d'au moins un capteur de lumiÃ¨re 12 et de sources lumineuses 14a-e (par exemple des LED, Ã longueurs d'onde dÃ©terminÃ©es) qui sont disposÃ©es de part et d'autre d'un canal 16 de passage d'un Ã©chantillon reprÃ©sentatif de la solution de 30 microalgues 18 Ã analyser. Les diffÃ©rentes sources lumineuses 14a-e sont 3066022 9 par exemple reliÃ©es Ã un driver LED (D), lui-mÃªme reliÃ© au capteur de lumiÃ¨re 12 (par exemple un capteur de lumiÃ¨re de type senseur digital TSL2561) via, par exemple, un bus 12C (de l'anglais Inter-Integrated Circuit) (B). 5 [0021] Les sources lumineuses 14a-e Ã©mettent des rayonnements lumineux 19a. Chaque rayonnement Ã©mis 19a prÃ©sente une longueur d'onde Ã et une intensitÃ© Io propre. AprÃ¨s le passage Ã travers l'Ã©chantillon reprÃ©sentatif de la solution de microalgues 18, les rayonnements lumineux dÃ©tectÃ©s 19b par le capteur de lumiÃ¨re 12 peuvent 10 avoir perdu de leur intensitÃ© et peuvent chacun prÃ©senter une intensitÃ© I propre, diffÃ©rente de l'intensitÃ© Io correspondante Ã©mise. Ceci est dÃ» au phÃ©nomÃ¨ne d'absorbance induit par la prÃ©sence des pigments colorÃ©s dans les microalgues en solution. Ce phÃ©nomÃ¨ne a Ã©tÃ© mis en Ã©quation par Beer-Lambert dont les Ã©quations ont Ã©tÃ© exposÃ©es plus haut. Ainsi, le 15 capteur de lumiÃ¨re 12 capte des rayonnements lumineux dÃ©tectÃ©s 19b diffÃ©rents des rayonnements lumineux 19a Ã©mis par les sources de lumiÃ¨re 14a-e, et il est possible de dÃ©terminer l'absorbance du milieu de culture. [0022] Comme mentionnÃ© ci-dessus, les longueurs d'ondes pertinentes peuvent Ãªtre dÃ©terminÃ©es expÃ©rimentalement. AprÃ¨s de 20 nombreux tests en laboratoire, cinq longueurs d'ondes ont Ã©tÃ© sÃ©lectionnÃ©es pour suivre l'Ã©volution de la culture de microalgues, par exemple de spirulines. Ainsi il a Ã©tÃ© dÃ©terminÃ© : - qu'une longueur d'ondes de 400 nm (UV) rapportÃ©e Ã une mesure Ã 680nm, permet de dÃ©terminer la santÃ© de la culture de microalgues, 25 - qu'une longueur d'ondes de 480 nm (bleu) permet d'analyser le contenu pigmentaire en carotÃ©noÃ¯des des microalgues, - qu'une longueur d'ondes de 620 nm (orange) permet d'analyser le contenu pigmentaire en phycocyanine des microalgues, 3066022 10 - qu'une longueur d'ondes de 680 nm (rouge) permet d'analyser le contenu pigmentaire en chlorophylle, et rapportÃ© Ã la mesure Ã 400nm permet de dÃ©terminer la santÃ© de la culture de microalgues, - qu'une longueur d'ondes de 800 nm (infrarouge) permet, rapportÃ© Ã la 5 valeur Ã 680 nm, de dÃ©terminer la concentration en microalgues si la culture subit une variation du pool pigmentaire de la population de microalgues. Cette longueur d'ondes permet aussi de constater une Ã©ventuelle invasion bactÃ©rienne dans la culture de microalgues. [0023] Le fonctionnement du dispositif 10 sera explicitÃ© Ã la 10 fin de la prÃ©sente description, toutefois, en bref, le procÃ©dÃ© de mesure de l'absorbance consiste Ã allumer chacune Ã leur tour les sources/LED 14a-e toutes orientÃ©es vers le capteur de lumiÃ¨re 12 afin de mesurer l'absorbance du milieu de culture 18 pour chacune des longueurs d'ondes dÃ©terminÃ©es. Les donnÃ©es mesurÃ©es sont ensuite normalisÃ©es par la valeur 15 d'absorbance mesurÃ©e pour chaque LED dans l'eau. Le dispositif 10 est par exemple commandÃ© par le bus I2C (B) d'un module Arduino muni d'une carte d'interface de type shield Grove. De maniÃ¨re connue en soi, un module Arduino, est une marque de cartes matÃ©riellement libres (publiÃ©s en licence libre) sur lesquelles se trouve un microcontrÃ´leur. 20 Classiquement, chaque module Arduino possÃ¨de au moins un rÃ©gulateur linÃ©aire 5V et un oscillateur Ã quartz 16MHz (ou un rÃ©sonateur cÃ©ramique dans certains modÃ¨les). Un module Arduino peut Ãªtre utilisÃ©, par exemple, pour construire des objets interactifs indÃ©pendants (on parle de prototypage rapide), ou peut Ãªtre utilisÃ© comme un moyen de connexion Ã un ordinateur 25 pour communiquer avec des logiciels. [0024] Plus prÃ©cisÃ©ment, comme illustrÃ© aux figures 2, 3a, 3b, et 4 qui est juste un exemple non limitatif de rÃ©alisation de l'invention, le dispositif 10 comporte deux parties : une partie infÃ©rieure destinÃ©e Ã Ãªtre immergÃ©e dans la solution de microalgues 18 et destinÃ©e Ã prendre des 30 mesures, et une partie supÃ©rieure destinÃ©e Ã analyser et traiter ces 3066022 11 mesures. Comme il sera dÃ©taillÃ© plus bas, le dispositif 10 est notamment destinÃ© Ã s'intÃ©grer Ã un systÃ¨me de culture et/ou de rÃ©colte et/ou de suivi de la culture d'une solution de microalgues, par exemple dans le cadre d'une culture de microalgues privÃ©e chez un utilisateur dÃ©sireux d'en 5 cultiver pour sa consommation personnelle. [0025] La partie infÃ©rieure du dispositif 10 comporte : - un boÃ®tier 20 (typiquement en plastique) Ã©tanche au milieu de culture 18, - les sources lumineuses 14a-e, e 10 - le capteur de lumiÃ¨re 12. La partie supÃ©rieure comporte, quant Ã elle, une carte Ã©lectronique (E). Seule la partie infÃ©rieure du dispositif 10 peut Ãªtre immergÃ©e dans la solution de microalgues 18. [0026] La carte Ã©lectronique (E) est disposÃ©e au moins en 15 partie dans le boÃ®tier 20. Elle est, par ailleurs, reliÃ©e aux sources lumineuses 14a-e et au capteur 12. [0027] Le boÃ®tier 20 prÃ©sente une forme gÃ©nÃ©rale extÃ©rieure cylindrique de rÃ©volution autour d'un axe X. Le diamÃ¨tre du boÃ®tier 20 est 20 compris entre 5mm et 60mm, par exemple 51mm, et sa hauteur est comprise entre 4mm et 50mm, par exemple, 45mm. Il est Ã©tanche et est configurÃ© pour Ãªtre immergÃ© au moins en partie dans la solution de microalgues 18. Le boÃ®tier 20 comporte deux parties : - un corps Ã©vidÃ© 21 rÃ©alisÃ© dans un matÃ©riau opaque Ã la lumiÃ¨re 25 ambiante, et - une couronne 22 coaxiale au corps Ã©vidÃ© 21, disposÃ©e dans le prolongement supÃ©rieur du corps Ã©vidÃ© 21. [0028] Le corps Ã©vidÃ© 21 forme une cavitÃ© interne de logement des sources lumineuses 14a-e et du capteur lumineux 12. Les 3066022 12 parois externes du corps Ã©vidÃ© sont, par exemple, de 3mm. L'intÃ©rÃªt de l'opacitÃ© du corps Ã©vidÃ© 21 est de rÃ©duire l'influence de l'Ã©clairage ambiant pour les diffÃ©rentes mesures Ã effecteur. [0029] La couronne 22 est formÃ©e par un alÃ©sage 5 cylindrique d'une partie supÃ©rieure du boÃ®tier 20, et est dÃ©limitÃ©e axialement (selon X) par un Ã©paulement annulaire permettant de la distinguer du corps Ã©vidÃ© 21. La couronne 22 forme ainsi une paroi circulaire Ã©tanche, destinÃ©e Ã protÃ©ger une partie infÃ©rieure de la carte Ã©lectronique (E), et Ã permettre la mise en coopÃ©ration du boÃ®tier 20 avec un dispositif d'accrochage au 10 rÃ©acteur de culture 23 contenant la solution de microalgues 18 (voir figure 2). En effet, le dispositif 10 est destinÃ© Ã mesurer l'absorbance d'une solution de microalgues 18 en culture. [0030] Le canal de passage 16 d'un Ã©chantillon reprÃ©sentatif de la solution de microalgues 18 Ã analyser, est mÃ©nagÃ© dans 15 la partie infÃ©rieure du boÃ®tier 20. Plus prÃ©cisÃ©ment, le corps Ã©vidÃ© 21 prÃ©sente une forme gÃ©nÃ©rale en U renversÃ© dont les ailes creuses dÃ©finissent entre elles le canal de passage 16. Le canal de passage 16 prÃ©sente une largeur comprise entre 0,1 et 20mm, par exemple, de 11mm. Le corps Ã©vidÃ© 21 comporte ainsi deux ailes (ou jambes) creuses sÃ©parÃ©es 20 l'une de l'autre par le canal de passage 16. La premiÃ¨re aile creuse du corps Ã©vidÃ© 21 abrite les sources lumineuses 14a-e, et la deuxiÃ¨me aile creuse abrite le capteur de lumiÃ¨re 12. Le canal de passage 16 prÃ©sente une forme parallÃ©lÃ©pipÃ©dique allongÃ©e et n'est dÃ©fini que par trois parois seulement, c'est-Ã -dire qu'il est dÃ©bouchant Ã ses deux extrÃ©mitÃ©s axiales 25 et ouvert, au moins en partie, le long de sa base, voire mÃªme sans base. Le fait que le canal 16 soit dÃ©bouchant sur deux extrÃ©mitÃ©s axiales y permet la libre circulation de la solution de microalgues 18. Le fait que le canal 16 soit Ã base ouverte (voire sans base) permet d'Ã©viter son encrassement. Ceci permet notamment d'Ã©viter, d'une part le 30 dÃ©veloppement de microorganismes non dÃ©sirÃ©s, et permet, d'autre part, 3066022 13 de prÃ©venir une obstruction dudit canal 16, prÃ©judiciable au bon dÃ©roulement des mesures. Le canal de passage 16est destinÃ© Ã assurer le passage d'une partie de la solution 18 (l'Ã©chantillon reprÃ©sentatif Ã analyser) dans laquelle le boÃ®tier 20 est immergÃ©. L'axe de rÃ©volution X du 5 boÃ®tier 20 est, ici, sensiblement perpendiculaire Ã un axe d'allongement Y du canal de passage 16. Le boÃ®tier 20 est donc traversÃ© de part en part par le canal de passage 16 formant une cuvette (en plastique) de spectromÃ©trie normalisÃ©e, c'est-Ã -dire, typiquement, de dimensions : 12mm x 12mm x 45mm. 10 [0031] Comme mentionnÃ© plus haut, le dispositif 10 comporte au moins deux (ici, cinq) sources lumineuses 14a-e (par exemple des diodes Ã©lectroluminescentes, LED) chacune configurÃ©e pour Ã©mettre un rayonnement lumineux 19a Ã une longueur d'onde Ã propre, diffÃ©rente de celle des rayonnements lumineux 19a Ã©mis par les autres sources 15 lumineuses 14a-e. La longueur d'onde de chaque rayonnement lumineux 19a Ã©mis est dÃ©terminÃ©e, comme mentionnÃ© ci-dessus, par des expÃ©riences en laboratoire : les sources lumineuses 14a-e sont configurÃ©es pour Ã©mettre des rayonnements lumineux 19a dont les longueurs d'ondes sont choisies parmi : 400 nm, 480 nm, 620 nm, 680 nm et 800 nm. Les 20 sources lumineuses 14a-e sont disposÃ©es sur un premier cÃ´tÃ© du canal de passage 16 (dans la premiÃ¨re aile creuse du corps Ã©vidÃ© 21). Afin d'optimiser les diffÃ©rentes mesures et la compacitÃ© du dispositif 10, les cinq sources lumineuses 14a-e sont montÃ©es sur un support unique 24 disposÃ© au niveau du premier cÃ´tÃ© du canal de passage 16. Le support unique 24 25 est constituÃ© d'un piÃ¨ce monobloc de forme parallÃ©lÃ©pipÃ¨de, dans laquelle est mÃ©nagÃ© au moins un orifice 25a, ici cinq 25b, 25c, 25d, 25e. L'un des orifice 25c prÃ©sente un axe de rotation s'inscrivant dans un plan perpendiculaire Ã la fois Ã l'axe de rÃ©volution X et Ã l'axe d'Ã©longation Y. Chaque orifice 25a-e est destinÃ© Ã recevoir une source lumineuse 14a-e. 30 Chaque orifice 25a-e prÃ©sente une forme cylindrique et l'axe de rÃ©volution 3066022 14 de chacun des orifices 25a-e est orientÃ© de maniÃ¨re Ã pointer vers le capteur de lumiÃ¨re 12, comme visible sur la figure 5b. Chaque source lumineuse 14a-e est insÃ©rÃ©e dans un orifice 25a-e correspondant. Chaque source lumineuse 14a-e s'oriente ainsi en suivant la direction de l'axe de 5 rÃ©volution de l'orifice 25a-e dans lequel elle a Ã©tÃ© insÃ©rÃ©e. Ceci permet de focaliser le faisceau de chacune des sources lumineuses 14a-e vers un seul et mÃªme point, Ã savoir le capteur de lumiÃ¨re 12, comme illustrÃ© sur la figure 5b. Cette organisation des sources lumineuses 14a-e permet Ã©galement de remplacer les sources lumineuses 14a-e sans avoir Ã 10 remplacer tout le dispositif 10 dans le cas oÃ¹ l'une (ou plusieurs) des sources lumineuses 14a-e ne fonctionne pas. Le support unique 24 prÃ©sente une longueur comprise entre 2 et 20mm, de prÃ©fÃ©rence 14mm. De prÃ©fÃ©rence, les centres de chaque orifice 25a-e sont Ã©loignÃ©s l'un de l'autre de 5,5mm. 15 [0032] En face des sources lumineuses 14a-e, sur un second cÃ´tÃ© opposÃ© du canal de passage 16 (dans la seconde aile creuse du corps Ã©vidÃ© 21), le boÃ®tier 20 comporte le capteur de lumiÃ¨re 12. Ce capteur de lumiÃ¨re 12 est configurÃ© pour dÃ©tecter les rayonnements lumineux 19b aprÃ¨s leur passage Ã travers la partie de la solution 18 qui 20 circule dans le canal de passage 16. Autrement dit, le capteur de lumiÃ¨re 12 est configurÃ© pour dÃ©tecter les rayonnements lumineux 19b aprÃ¨s que ceux-ci aient traversÃ© l'Ã©chantillon reprÃ©sentatif de solution 18 du canal de passage 16. Le dispositif 10 peut bien Ã©videmment comporter plusieurs capteurs de lumiÃ¨re 12 diffÃ©rents. 25 [0033] Dans l'exemple reprÃ©sentÃ©, le boÃ®tier 20 comprend en outre deux parois planes 26a, 26b sensiblement parallÃ¨les. Ces parois planes sont transparentes : - aux longueurs d'onde des rayonnements lumineux 19a Ã©mis par les sources lumineuses 14a-e, et 3066022 15 - aux rayonnements lumineux 19b transmis par l'Ã©chantillon reprÃ©sentatif de solution 18, et captÃ©s par le capteur de lumiÃ¨re 12. Ces parois sont disposÃ©es entre les premier et second cÃ´tÃ©s du canal de passage 16 et dÃ©finissent au moins une partie du canal de passage 16. En 5 effet, chacun des cÃ´tÃ©s du canal de passage 16 formÃ© par les ailes creuses du corps Ã©vidÃ© 21 comporte une lumiÃ¨re. Ces lumiÃ¨res sont alignÃ©es l'une avec l'autre de maniÃ¨re Ã permettre le passage des rayonnements lumineux 19a, 19b depuis les sources lumineuses 14a-e vers le capteur de lumiÃ¨re 12. Les parois planes 26a, 26b recouvrent ainsi la lumiÃ¨re de 10 chacune des parois. Ils permettent de rendre possible le passage des rayonnements lumineux 19a, 19b depuis les sources lumineuse 14a-e vers le capteur de lumiÃ¨re 12, tout en assurant l'Ã©tanchÃ©itÃ© du boÃ®tier 20 et, en particulier, du corps Ã©vidÃ© 21 abritant l'ensemble des Ã©lÃ©ments Ã©lectroniques du dispositif 10. 15 [0034] Comme mentionnÃ© plus haut, le dispositif 10 est destinÃ© Ã Ãªtre fixÃ© au rÃ©acteur de culture 23 de microalgues en suspension dans une solution 18, de maniÃ¨re Ã ce que le dispositif 10 soit au-moins partiellement immergÃ© dans la solution 18. Le rÃ©acteur 23 en question peut, par ailleurs, comporter un systÃ¨me de bullage (S) destinÃ© Ã agiter la 20 solution de microalgues 18, et/ou un capteur de tempÃ©rature (T) Ã©galement destinÃ© Ã Ãªtre immergÃ© dans la solution de microalgues 18 et Ã en mesurer la tempÃ©rature. [0035] Comme visible sur la figure 2, un organe 28 de suivi de l'Ã©volution de l'Ã©tat de la culture est reliÃ© au dispositif 10. Cet organe 25 peut prendre la forme par exemple, d'un Ã©cran permettant d'afficher les diffÃ©rentes mesures enregistrÃ©es et les calculs effectuÃ©s par la carte Ã©lectrique (E). [0036] L'ensemble formÃ© par le dispositif 10, le rÃ©acteur 23, l'organe de suivi 28, le systÃ¨me de bullage (S) et le capteur de tempÃ©rature 30 (T) forme ainsi un systÃ¨me de culture et/ou de rÃ©colte et/ou de suivi d'une 3066022 16 solution de microalgues 18, et permet la bonne conduite de ladite culture 18. Le systÃ¨me peut par ailleurs comporter une rÃ©sistance chauffante et un systÃ¨me d'Ã©clairage (non reprÃ©sentÃ©s) destinÃ©s Ã moduler les conditions de culture au sein du rÃ©acteur 23. Il s'agit ici donc d'un systÃ¨me Ã©lectronique 5 interactif de conduite d'une culture de microalgues qui permet Ã un utilisateur d'agir sur la solution de microalgues 18 cultivÃ©es, par le biais d'actionneurs (le systÃ¨me de bullage (S), la rÃ©sistance chauffante, le systÃ¨me d'Ã©clairage), en fonction d'informations obtenues au moyens de capteurs, notamment le dispositif 10 et le capteur de tempÃ©rature (T).Le 10 systÃ¨me peut Ã©galement Ãªtre automatisÃ©. [0037] Comme Ã©voquÃ© plus haut, le procÃ©dÃ© de mesure de l'absorbance de la solution 18 comportant des microalgues en solution, se met en oeuvre au moyen du dispositif 10 tel que dÃ©crit ci-dessus. Ce procÃ©dÃ© est caractÃ©risÃ© en ce qu'il comprend une Ã©tape consistant Ã 15 Ã©mettre successivement au moins deux rayonnements lumineux 19a (dans le cas prÃ©sent, cinq rayonnements lumineux 19a) de longueurs d'ondes diffÃ©rentes au moyens des sources lumineuses 14a-e, et Ã dÃ©tecter les rayonnements 19b aprÃ¨s leur passage Ã travers l'Ã©chantillon reprÃ©sentatif de la solution 18 au moyen du capteur de lumiÃ¨re 12. 20 [0038] Les cinq rayonnements 19a de longueurs d'ondes diffÃ©rentes sont Ã©mis successivement, et comme dÃ©jÃ mentionnÃ©, les longueurs d'onde de ces rayonnements 19a Ã©mis sont choisies parmi : 400 nm, 480 nm, 620 nm, 680 nm et 800 nm. [0039] Suite Ã l'Ã©mission des diffÃ©rents rayonnements 19a 25 successifs et Ã la rÃ©ception des diffÃ©rents rayonnements 19b par le capteur de lumiÃ¨re 12, le procÃ©dÃ© comprend une Ã©tape de calcul de l'absorbance de la solution de microalgues 18 Ã chaque longueur d'onde et une Ã©tape de normalisation Ã partir d'absorbances obtenus par le mÃªme procÃ©dÃ© dans de l'eau. En effet, comme dÃ©jÃ mentionnÃ© prÃ©cÃ©demment, aprÃ¨s leur passage 3066022 17 Ã travers la solution 18, une partie des rayonnements 19a peut Ãªtre absorbÃ©e par les pigments prÃ©sents dans les microalgues de la solution, et les rayonnements 19b captÃ©s par le capteur de lumiÃ¨re 12 peuvent prÃ©senter une intensitÃ© 1 plus faible que l'intensitÃ© 10 des rayonnements 19a 5 Ã©mis par les sources lumineuses 14a-e. Ainsi, la carte Ã©lectronique (E) peut dÃ©tecter une diffÃ©rence entre les rayonnements lumineux Ã©mis 19a par les sources de lumiÃ¨res 14a-e et les rayonnements lumineux 19b captÃ©s par le capteur de lumiÃ¨re 12. [0040] A l'aide de la carte Ã©lectronique (E), la ou les 10 Ã©tape(s) de mesure(s) et normalisations est/sont suivie(s) d'une Ã©tape de calcul pendant laquelle est calculÃ©e au moins un rapport entre l'absorbance de la solution de microalgues 18 Ã une premiÃ¨re longueur d'onde (par exemple 400 nm) et l'absorbance de la solution 18 Ã une seconde longueur d'onde (par exemple 680 nm). Comme expliquÃ© ci-dessus (voir figure 1a), 15 ce calcul d'un rapport de DO (densitÃ© optique) permet de dÃ©terminer l'Ã©tat de santÃ© des microalgues de la solution 18. [0041] Une fois ce premier rapport calculÃ©, un second rapport est calculÃ© Ã partir des longueurs d'ondes de 680 et 800 nm respectivement. Ce deuxiÃ¨me rapport calculÃ© permet, d'une part, de 20 dÃ©terminer la concentration en microalgues dans la solution 18 et permet, d'autre part, grÃ¢ce au suivi de ce rapport dans le temps de dÃ©tecter la prÃ©sence Ã©ventuelle de bactÃ©ries dans la solution 18. En effet, les bactÃ©ries absorbent de maniÃ¨re connue en soi, de maniÃ¨re diffÃ©rente que les microalgues en solution 18. Les bactÃ©ries absorbent en effet 25 prÃ©fÃ©rentiellement certaines longueurs d'ondes infrarouge contrairement aux microalgues qui absorbent prÃ©fÃ©rentiellement dans le spectre visible en fonction de leur pool pigmentaire. [0042] De maniÃ¨re Ã optimiser la rÃ©ponse Ã apporter en cas de dÃ©tÃ©rioration de l'Ã©tat de santÃ© des microalgues, le procÃ©dÃ© comporte en 3066022 18 outre une Ã©tape de surveillance dans le temps, du premier rapport calculÃ©. Si la valeur du rapport calculÃ© dÃ©passe un certain seuil (dÃ©terminÃ© expÃ©rimentalement), le dispositif 10 dÃ©clenche une alerte (pouvant s'afficher par l'organe 28 ou Ã©mis par celui-ci, dans le cas d'une alerte 5 visuelle, sonore ou vibrante, par exemple) de maniÃ¨re Ã prÃ©venir tout utilisateur potentiel que la culture de microalgues n'est pas en bonne santÃ©. [0043] Ainsi, un capteur de lumiÃ¨re 12 permet de renvoyer les informations nÃ©cessaires au pilotage d'appareils de production de microalgues alimentaires, tels que le rÃ©acteur de culture 23 du dispositif 10 10 de la prÃ©sente invention. Cette caractÃ©risation permet de mettre en Ã©vidence une Ã©ventuelle dÃ©tÃ©rioration de l'Ã©tat de santÃ© de la culture de microalgues en solution 18 de maniÃ¨re beaucoup plus prÃ©coce que par une simple observation visuelle. Ceci permet donc, en cas de problÃ¨me, d'intervenir plus rapidement et de fait, de fiabiliser la production et de limiter 15 les pertes. REVENDICATIONS1. Dispositif (10) de mesure de l'absorbance d'une solution (18) comportant des microalgues en suspension, ce dispositif (10) comportant : - un boÃ®tier Ã©tanche (20) configurÃ© pour Ãªtre immergÃ© au moins en partie dans la solution (18) et comprenant un canal de passage (16) d'une partie de la solution (18), - au moins deux sources lumineuses (14a, 14b) configurÃ©es pour Ã©mettre des rayonnements lumineux (19a) Ã des longueurs d'ondes diffÃ©rentes et disposÃ©es sur un premier cÃ´tÃ© du canal de passage (16), et - au moins un capteur de lumiÃ¨re (12) disposÃ© sur un second cÃ´tÃ© opposÃ© du canal de passage (16), et configurÃ© pour dÃ©tecter les rayonnements lumineux (19a) Ã©mis par lesdites au moins deux sources lumineuses (14a, 14b) aprÃ¨s qu'ils aient traversÃ© la partie de la solution (18) prÃ©sente dans le canal de passage (16). 2. Dispositif (10) selon la revendication prÃ©cÃ©dente, dans lequel le boÃ®tier (20) comprend un corps Ã©vidÃ© (21) opaque comportant une cavitÃ© interne de logement des sources lumineuses (14a, 14b, 14c, 14d, 14e) et du capteur de lumiÃ¨re (12). 3. Dispositif (10) selon l'une quelconque des revendications prÃ©cÃ©dentes, dans lequel le canal de passage (16) a une forme allongÃ©e rectiligne et est dÃ©bouchant Ã ses deux extrÃ©mitÃ©s axiales. 4. Dispositif (10) selon l'une quelconque des revendications prÃ©cÃ©dentes, dans lequel les sources lumineuses (14a, 14b, 14c, 14d, 14e) sont fixÃ©es sur un support unique (24) disposÃ© au niveau dudit premier cÃ´tÃ©, ledit support Ã©tant, de prÃ©fÃ©rence, configurÃ© de maniÃ¨re Ã faire converger les rayonnements lumineux (19a, 19b) . 5. Dispositif selon l'une quelconque des revendications prÃ©cÃ©dentes, comprenant au moins une carte Ã©lectronique (E) reliÃ©e aux sources 3066022 20 lumineuses (14a, 14b, 14c, 14d, 14e) et au capteur de lumiÃ¨re (12), et disposÃ©e au moins en partie dans le boÃ®tier (20). 6. RÃ©acteur de culture de microalgues en suspension dans une solution, comportant au moins un dispositif (10) selon l'une quelconque des 5 revendications 1 Ã 4, destinÃ© Ã Ãªtre immergÃ© dans ladite solution (18). 7. ProcÃ©dÃ© de mesure de l'absorbance d'une solution (18) comportant des microalgues en solution, au moyen d'un dispositif (10) selon l'une des revendications 1 Ã 4, caractÃ©risÃ© en ce qu'il comprend une Ã©tape consistant a: 10 Ã©mettre successivement au moins deux rayonnements lumineux de longueurs d'ondes diffÃ©rentes au moyens des sources lumineuses (14a, 14b, 14c, 14d, 14e), et Ã dÃ©tecter lesdits rayonnements au moyen du capteur de lumiÃ¨re (12). 8. ProcÃ©dÃ© selon la revendication prÃ©cÃ©dente, comprenant une Ã©tape 15 de calcul d'au moins une absorbance de la solution (18) Ã partir d'un paramÃ¨tre mesurÃ© par le capteur de lumiÃ¨re (12). 9. ProcÃ©dÃ© selon la revendication prÃ©cÃ©dente, comprenant une Ã©tape de calcul d'au moins un rapport entre l'absorbance de la solution (18) Ã une premiÃ¨re longueur d'onde et l'absorbance de la solution (18) Ã une seconde 20 longueur d'onde, de maniÃ¨re Ã dÃ©terminer l'Ã©tat de santÃ© des microalgues de la solution (18) Ã partir dudit au moins un rapport calculÃ©. 10. ProcÃ©dÃ© selon la revendication 9, comprenant une Ã©tape de surveillance dans le temps dudit au moins un rapport calculÃ©, et une Ã©tape de dÃ©tection, voire d'alerte, lorsque ledit au moins un rapport calculÃ© 25 augmente dans le temps.