Brevet FR3023548A1 — publié le 20160115

L'invention a pour objet le traitement des eaux usées domestiques ou industrielles à l'aide de microalgues mixotrophes. Il est également possible de dire que l'invention concerne la culture de microalgues au travers de la dépollution des eaux usées tant les objectifs de ces deux disciplines sont intriqués : dépollution des eaux usées pour produire une eau utilisable par 10 culture de microalgues utilisables dans de nombreux domaines comme par exemple la production de biocarburant, comme du bioéthanol, ou en chimie verte par exemple par la production de biopolymères ou de polysaccharides. L'invention concerne particulièrement une amélioration des dispositifs de traitement des eaux usées par culture des microalgues en 15 mixotrophie et en innoculant un procédé de raceway par une culture très concentrée en microalgues issues de cultures en fermenteur. L'invention concerne également un procédé de traitement des eaux usées par culture de microalgues caractérisées en ce qu'il comprend une injection en continue ou de manière discontinue de microalgues précultivées 20 dans un fermenteur, lesdites microalgues injectées étant avantageusement en phase de croissance, ou en début de phase de croissance. Le traitement des eaux usées par des microalgues (inversement la culture des microalgues par traitement des eaux usées) est relativement bien connu et documenté dans l'art antérieur. On citera à cet égard la revue d'Abdel- 25 Raouf et coll. (Saudi Journal of Biological Sciences (2012) 19, 257-275). En résumé, les eaux usées peuvent être traitées par culture de microalgues dans des bassins, portant le nom de raceway ou lagunage à haut rendement algal, où les eaux usées, avantageusement préalablement débarrassées de leur contenu insoluble (boues et autres), sont incubées dans 30 des bassins adaptés en présence de microalgues connues pour leur capacité à assimiler l'azote (l'étape de dépollution en azote s'avère être la plus couteuse dans les processus usuels de traitement des eaux usées) par exemple contenu dans les nitrates (NO3- ), à assimiler des nutriments contenus dans les eaux usées à traiter tels le carbone organique facilement assimilable, l'azote soluble (NH4) ou encore le phosphore soluble (P043-), à assimiler également des métaux lourds tels que le zinc, le cadmium, l'aluminium, le chrome, le cuivre, le plomb, le mercure, le nickel (voir à cet égard la revue de Raul Muh-oz et Benoit Guieysse, Water Research, (2006) 40, 2799-2815). Grâce à la culture mixotrophe, les ions ammonium (NH4+) vont être transformés en ions nitrates (NO3-), cette étape dans le procédé de traitement classique des eaux usées par boues activées représentent la majorité des coûts énergétiques, puisqu'il nécessite de grande quantité d'oxygène à introduire pour les bactéries et donc de grande quantités d'énergie. Il s'avère qu'en plus la croissance des souches de microalgues est favorisée par injection de CO2 dans le milieu de culture. Or le CO2 est un gaz polluant de l'atmosphère généré entre autres par de nombreuses industries et pour lequel il est nécessaire de trouver soit des moyens physiques de captation soit d'autres moyens afin d'en diminuer la concentration dans l'air ambiant. Le traitement des eaux usées par culture de microalgues est un des moyens de recycler le CO2 puisqu'il est aisé de récupérer le CO2 et de l'injecter dans les bassins de culture de microalgues afin de favoriser leur croissance. Un problème cependant bien connu des bassins de culture de microalgues est leur très grande occupation du sol du fait de la nécessité de grandes surfaces pour implanter les bassins de culture. Ce problème a en partie été résolu par l'immobilisation des souches de microalgues sur des supports immergés dans les raceways ce qui permet, à surface de contact algue/milieu de culture identique, de réduire l'emprise au sol du dispositif de culture (voir à cet égard la revue de Nirupama Mallick (BioMetals (2002)15, 377-390). De plus, l'immobilisation de souches permet d'augmenter la concentration cellulaire dans les eaux usées à traiter et donc d'intensifier le procédé de bioremédiation algal ; ainsi, le raceway ou procédé de culture algal extensif, comprend une emprise au sol moins importante. Il n'en demeure pas moins qu'un autre problème subsiste malgré toutes les améliorations apportées au cours du temps aux dispositifs de traitement des eaux usées par culture des microalgues : la déperdition en microalgues dans le milieu de culture au cours du processus de traitement. Cette déperdition peut être obligatoire ; en effet le dispositif servant par définition non seulement au traitement des eaux usées mais également à la production de microalgues celles-ci croissent au cours de la culture et afin d'éviter l'engorgement du dispositif il est nécessaire de régulièrement récolter les microalgues produites et donc d'en diminuer la concentration dans le dispositif. Indépendamment de cette déperdition obligatoire la concentration en microalgues diminue également naturellement au cours de la culture. Il est donc nécessaire de trouver un moyen de maintenir constante la quantité d'algue dans le bassin de culture afin de maintenir constant le taux de dépollution des eaux usées par le dispositif et parallèlement le taux de croissance des microalgues cultivées. De plus il est bien connu que la croissance des microalgues n'est pas linéaire mais commence par une phase de latence au cours de laquelle le taux de dépollution du milieu de culture sera quasi nul, puis se poursuit par une phase exponentielle au cours de laquelle le taux de croissance des microalgues est maximal ce qui se traduit dans les dispositifs de traitement des eaux usées par culture d'algues par un maximum de dépollution du milieu par les microalgues, puis se poursuit par une phase stationnaire suivi d'une phase de décroissance au cours desquelles le dispositif de traitement des eaux usées perd de son efficacité. On comprend alors qu'il peut être intéressant au cours du cycle de traitement des eaux usées de disposer dans le dispositif le plus longtemps possible de microalgues en phase de croissance exponentielle tout en évitant au maximum la phase de latence initiale, et les phases stationnaires et bien évidement de décroissance. C'est un des buts de la présente invention que de fournir un moyen de maintenir la quantité de microalgues en phase de croissance exponentielle constante dans un dispositif de traitement des eaux usées. Ainsi l'invention a pour objet premier un dispositif de traitement des eaux usées par culture de microalgues, caractérisé en ce qu'il comprend au moins un bassin de culture des microalgues, un fermenteur et au moins un moyen d'alimentation en microalgues reliant ledit fermenteur audit bassin de culture des microalgues, ceci afin d'alimenter quand cela est nécessaire le bassin de culture en microalgues précultivées dans ledit fermenteur. Le dispositif selon l'invention présente l'avantage de permettre le maintien quasi constant dans le bassin de traitement des eaux usées d'un taux de microalgues en phase exponentielle suffisant pour que le rendement du traitement des eaux usées reste lui aussi quasi constant. Selon l'invention, le fermenteur pourra être plus petit en volume que le bassin de culture des microalgues. Il pourra y avoir un facteur volumique au moins de 100 à 1000 entre les deux. Le fermenteur pourra être de tout type connu pour peu qu'il permette la culture de microalgues. A cet égard on pourra citer les fermenteurs fabriqués par les sociétés Pierre Guérin et Sartorius de type cuve agitée. Ces fermenteurs permettront de produire les souches dans des conditions contrôlées permettant d'atteindre des hautes densités cellulaires sur le site même de l'installation de dépollution et d'injecter ces souches dans le raceway, lieu de la dépollution. Une stratégie de type fermentation discontinue alimentée (fed-batch) pourra être adoptée et cette culture de souche se fera en conditions stériles. Les souches seront produites une à une dans ce même fermenteur. Le milieu utilisé pour faire croître les souches pourra être fait à partir de substrats carbonés peu honéreux de type mélasse de canne de sucre ou de 25 glucose monohydraté de pureté modérée (>80%) par exemple. Selon encore l'invention, ledit moyen d'alimentation en microalgues reliant ledit fermenteur audit bassin de culture des microalgues pourra être tout moyen connu pour peu qu'il permette d'introduire au moment désiré, à savoir plutot en phase de croissance de la souche, dans le bassin de culture des 30 microalgues les microalgues cultivées dans le fermenteur. A cet égard on peut citer le soutirage en conditions stériles du fermenteur dit aussi sequenced batch reactor. L'idée étant de mener une fermentation, mener la culture en phase exponentionnelle, vidanger une grosse partie du volume (environ 80% du volume) dans le bassin ou sur les supports d'immobilisation et de repartir avec le reste du milieu de culture et la souche pour repartir plus rapidement en phase de croissance. Selon une première variante de l'invention, ledit dispositif de traitement des eaux usées peut comprendre en outre un bassin de décantation, avantageusement disposé en amont dudit bassin de culture des microalgues, dans lequel les composants solides des eaux usées à traiter pourront être séparés de l'eau à dépolluer. La séparation des composants solides des eaux usées à traiter pourra être réalisée par tout moyen connu de l'homme du métier, avantageusement par décantation, par filtration, ou encore par filtration et décantation. Selon une deuxième variante de l'invention, ledit dispositif de traitement des eaux usées peut comprendre en outre un bassin de séparation, avantageusement disposé en aval dudit bassin de culture des microalgues, dans lequel lesdites microalgues pourront être séparée de l'eau à traiter et éventuellement chacune utilisée directement ou pour des traitements ultérieurs. En effet la culture d'algues et donc le traitement des eaux usées, fonctionnant en continu, les algues qui auront dépollué les eaux des nutriments et consommé le dioxyde de carbone, pourront être récoltées régulièrement dans la zone de séparation. La biomasse en suspension dans l'eau pourra ainsi être concentrée. Tout moyen de concentration pourra être utilisé à ce stade comme par exemple la précipitation avec des sels de fer (exemple : chlorure ferrique,FeCI3) avec des sels d'aluminium (exemple : sulfate d'Alumine) et aussi plus avantageusement pour la valorisation de la biomasse la flottation, l'autoflocculation, la sédimentation gravitaire puis centrifugation, l'ajout de polymères organiques cationiques ou anioniques naturels (exemple : le chitosan) voire la micro ou l'ultrafiltration. Les algues pourront alors être récoltées par exemple à l'aide d'une pompe en fond d'ouvrage. Selon une troisième variante de l'invention, ledit dispositif de traitement des eaux usées peut comprendre en outre un ou plusieurs moyen (s) d'apport de gaz carbonique (CO2) dans le bassin de culture des microalgues. Ce moyen d'apport de CO2 pourra être tout moyen connu de l'homme du métier. Avantageusement le CO2, par exemple en provenance des industries des secteurs cimentier, agroalimentaire, énergétique (pétrolier et gazier, centrale à charbon), agro-alimentaire, des industries de la chimie, ou encore des incinérateurs ou des stations d'épuration ou des industries de la fabrication d'engrais, pourra être stocké sous forme comprimée et pourra être réinjecté dans le bassin quand les microalgues en ont besoin, c'est-à-dire principalement la journée quand le bassin est éclairé par la lumière naturelle, c'est-à-dire au moment où les microalgues sont en phase de métabolisme photosynthétique (phase diurne), ceci permettant d'optimiser la captation de CO2. Le CO2 pourra être injecté par voie gazeuse via des diffuseurs à moyennes ou fines bulles (tailles des bulles maximum 3 à 4 mm). Les fines bulles pourront être privilégiées pour maximiser la diffusion de CO2 dans le milieu. En effet, plus les bulles seront petites et plus le rapport surface de transfert/volume sera important donc plus le transfert de CO2 dans la phase liquide sera important. Les diffuseurs pourront être sous toute forme connue, avantageusement à disques, à plaques ou à tubes. Le gaz injecté pourra contenir au moins 4% de CO2, avantageusement de 15% à 100%, préférentiellement de 15% ou 99% (limite physique à la concentration en CO2 ; données Air Liquide). Selon une quatrième variante de l'invention, ledit dispositif de traitement des eaux usées peut comprendre en outre au moins un moyen de fixation des microalgues. Il est connu qu'un des intérêts de la fixation des algues est de s'affranchir partiellement de la contrainte du temps de division cellulaire des souches. En effet, une souche fixée, immobilisée sur un support, du fait qu'elle est constamment nourrie a une durée de vie 10 à 100 fois plus longue et des activités enzymatiques décuplées par rapport à la même quantité d'algues en suspension. Tout moyen connu pour fixer les microalgues pourra être utilisé dans le dispositif. Selon l'invention le moyen de fixation pourra être de tout type, en toute matière, de toute forme et de tout volume, compatibles avec la fonction pour laquelle ledit moyen de fixation est utilisé et compatible avec le dispositif. Avantageusement ledit moyen de fixation des microalgues pourra être en une matière poreuse comme par exemple la pouzzolane, la vermiculite, la perlite, des billes d'alginates, du carraghénane, coquilles d'huîtres ou encore les polyuréthanes ou les résines plastiques en polyéthylènes à grande surface spécifique préférentiellement la vermiculite et la pouzzolane. Lesdits moyens de fixation pourront être utilisés en suspension dans l'eau ou conditionnés dans des sacs grillagés qui permettront de retenir les supports et donc les souches. Le volume occupé par lesdits moyens de fixation pourra aller de 1% à 50% du volume du bassin. On comprend qu'ainsi le dimensionnement du bassin sera optimisé. Selon une cinquième variante de l'invention, ledit dispositif de traitement des eaux usées peut comprendre en outre au moins un moyen de recirculation des eaux entre ledit bassin de culture des microalgues et ledit bassin de décantation. Cela pourra permettre entre autre la recirculation en tête de dispositif, dans le bassin de décantation qui forme également une zone d'anoxie assurant la dénitrification des eaux à traiter, des nitrates contenus dans l'eau ce qui pourra permettre l'élimination total de l'azote dans la phase liquide. On comprend que le moyen de recirculation des eaux pourra être tout moyen connu de l'homme du métier comme par exemple une combinason de tubulures, de vannes, de pompes et de moyen de commande de l'ensemble. Selon cette variante on peut envisager un taux de recirculation compris entre 50 et 500%, avantageusement 100 et 400% ; et très avantageusement 150%. Selon une sixième variante de l'invention il est possible d'envisager que ledit dispositif de traitement des eaux usées comprenne en outre un ou plusieurs moyen(s) d'éclairage. Tout type de moyen d'éclairage connu pourra être utilisé. Avantageusement on citera l'utilisation de lampes, de rampes lumineuses, ou encore de palles lumineuses comme évoqué dans le brevet Fermentalg, FR135364. On sait en effet que sous les latitudes françaises, un facteur six existe entre la puissance solaire incidente maximum en été et la puissance minimum en hiver. L'ajout de moyen d'éclairage pourra permettre de maintenir les performances du dispositif constantes ou quasi-constantes toute l'année. Selon une septième variante de l'invention il est possible d'envisager que ledit dispositif de traitement des eaux usées comprenne en outre un ou plusieurs moyen(s) de régulation de la température. Tout type de moyens de régulation ou d'isolation thermique du procédé raceway (parois calorifugées) de la température connu pourra être utilisé. Avantageusement on citera l'utilisation d'un calorifugeage des parois du dispositif, des moyens de chauffage (lampes chauffantes, résistances chauffantes, captation de chaleur : mise sous serre du raceway par exemple etc., des moyens de refroidissement). Ledit dispositif de traitement des eaux usées peut en outre comprendre tout autre moyen connu permettant d'améliorer ses performances que ce soit dans le domaine du traitement des eaux et/ou dans celui de la croissance des microalgues.L'invention a également pour objet un procédé de dépollution des eaux usées par culture de microalgues, comprenant une étape de dépollution des eaux par culture des algues dans un bassin de type Raceway caractérisé en ce que l'on injecte dans le bassin de culture, régulièrement ou en continu, des souches d'algues prélablement précultivées dans un fermenteur. Selon une variante de l'invention le procédé de dépollution des eaux usées par culture de microalguespeut mettre en oeuvre un dispositif tel que décrit précédement. Avantageusement le procédé selon l'invention pourra mettre en oeuvre des microalgues pouvant supporter de hautes teneurs en CO2 dissous (pH du milieu de culture pouvant atteindre une valeur aussi basse que 4) et de hautes teneurs en azote (ammonium maximum de 3 g NH4±/L et préférentiellement entre 40 et 100 mg NH4/L, nitrates maximum de 2 g N037L préférentiellement entre 5 et 50mgN037L). Selon une variante de l'invention ledit procédé mets en oeuvre des microalgues mixotrophes. Selon une autre variante de l'invention ledit procédé mets en oeuvre 30 des microalgues d'eau douce. Selon encore une autre variante de l'invention ledit procédé mets en oeuvre des microalgues mixotrophes d'eau douce. Selon l'invention lesdites microalgues peuvent être choisies parmi les souches des genres Botryococcus, Chlorella, Scenedesmus, Micractinium, Euglena, Nitzschia, Porphiridium, Chlamydomonas, Stephanodiscus, Monoraphidiumet préférentiellement des genres Chlorella, Botryococcus, Scenedesmus, Micractinium et Euglena. Lorque les microalgues sont du genre Botryococcus, elles pourront être choisies parmi les espèces B. australis, B. balkachicus, B. braunii, B. calcareus, B. canadensis, B. comperei, B. coorongianus, B. femandoi, B. giganteus, B. neglectus, B. pila, B. protuberans, B. sudeticus, B. terribilis, B. terricola. Avantageusement selon l'invention les algues du genre Botryococcus pourront être des algues de l'espèce B. braunii. Lorque les microalgues sont du genre Chlorella, elles pourront être choisies parmi les espèces C. acuminata, C. anitrata, C. antarctica, C. botryoides, C. conductrix, C. con glomerata, C. desiccata, C. emersonii, C. fusca, C. glucotropha, C. homosphaera, C. infusionum, C. luteoviridis, C. marina, C. miniata, C. minutissima, C. mirabilis, C. noctuma, C. oocystoides, C. ovalis, C. parasitica, C. parva, C. peruviana, C. protothecoides, C. pyrenoidosa, C. regularis, C. rugosa, C. saccharophila, C. satina, C. sorokiniana, C. spaerckii, C. stigmatophora, C. subsphaerica, C. variabilis, C. varie gata, C. vulgaris, C. xanthella, C. zopfingiensis. Avantageusement selon l'invention les algues du genre Chlorella pourront être des algues choisies parmi les espèces C. sorokiniana ou C. vulgaris. Lorque les microalgues sont du genre Scenedesmus, elles pourront être choisies parmi les espèces S. abundans, S. aciculatus, S. aculeolatus, S. aculeotatus, S. acuminatus, S. acutiformis, S. acutus, S. aldavei, S. ambuehlii, S. anhuiensis, S. anomalus, S. apicauda tus, S. apicula tus, S. arcua tus, S. arista tus, S. arma tus, S. arvemensis, S. bacillaris, S. baculiformis, S. bajacalifomicus, S. balatonicus, S. basiliensis, S. bemardii, S. bicauda tus, S. bicellularis, S. bidenta tus, S. bijuga, S. bijuga tus, S. bijugus, S. brasiliensis, S. breviaculeatus, S. brevispina, S. caribeanus, S. cariatus, S. caudatoaculeolatus, S. cauda tus, S. chlorelloides, S. circumfusus, S. coalitus, S. costatogranulatus, S. crassidenta tus, S. curvatus, S. decorus, S. denticula tus, S. deserticola, S. dileticus, S. dimorphus, S. disciformis, S. dispar, S. distentus, S. ecomis, S. ellipsoideus, S. ellipticus, S. falca tus, S. fenestratus, S. grahneisii, S. granulatus, S. gujaratensis, S. hanleyi, S. helveticus, S. heteracanthus, S. hindakii, S. hirsutus, S. hortobagyi, S. huangshanensis, S. hystrix, S. incrassatulus, S. indianensis, S. indicus, S. intermedius, S. jovais, S. jugalis, S. kerguelensis, S. kissii, S. lefevrei, S. littoralis, S. longispina, S. Ion gus, S. mirus, S. multistria tus, S. naegelii, S. nanus, S. oahuensis, S. obliquus, S. obtusus, S. olvaltemus, S. opoliensis, S. ovaltemus, S. pannonicis, S. papillosum, S. parisiensis, S. parvus, S. pecsensis, S. perforatus, S. planctonicus, S. plarydiscus, S. platydiscus, S. pleiomorphus, S. polessicus, S. polyglobulus, S. polyspinosus, S. praetervisus, S. prismaticus, S. producto-capitatus, S. protuberans, S. pseudoarma tus, S. pyrus, S. quadrialatus, S. quadricauda, S. quadrispina, S. raciborskii, S. reginae, S. reniformis, S. rostrato-spinosus, S. rotundus, S. schnepfii, S. securiformis, S. semipulcher, S. senilis, S. serrato- perfora tus, S. serra tus, S. serrula tus, S. setiferus, S. smithii, S. sou, S. sooi, S. spinosus, S. spinula tus, S. stria tus., S. subspica tus, S. tetradesmiformis, S. tricosta tus, S. tschudyi, S. vacuolatus, S. velitaris, S. verrucosus, S. vesiculosus, S. weberi, S. wisconsinensis, S. wuhanensis, S. wuhuensis. Avantageusement selon l'invention les algues du genre Scenedesmus pourront être des algues choisies parmi les espèces S. obliquus ou S. quadricauda. Lorque les microalgues sont du genre Micractinium, elles pourront être choisies parmi les espèces M. appendiculatum, M. belenophorum, M. bomhemiense, M. conductrix, M. conococcoides, M. crassisetum, M. crassispinum, M. elongatum, M. eriense, M. extremum, M. inermum, M. octospinum, M. parvisetum, M. parvulum, M. parvum, M. paucispinum, M. pusillum, M. pusillum f. quadrisetum, M. pusillum var. mucosum, M. pusillum var. elegans, M. pusillum var. longisetum, M. pusillum, M. quadrisetum, M. radiatum, M. reisseri, M. sp., M. strigoniense, M. viride. Avantageusement selon l'invention les algues du genre Micractinium pourront être des algues choisies parmi les espèces M. sp. et M. pusillum. Lorque les microalgues sont du genre Euglena, elles pourront être choisies parmi les espèces E. acauda, E. acaulis, E. acus, E. acusformis, E. n adhaerens, E. agilis, E. ahi, E. alata, E. allorgei, E. americana, E. amphipyrenica, E. anabaena, E. anabaenaminima, E. anaerobica, E. anguillula, E. angusta, E. ante tossa, E. anura, E. aquaepurae, E. ara ci, E. archaeoplastidiata, E. arcus, E. ascusformis, E. astasioides, E. aumuelleri, E. austalica, E. australica, E. bacillaria, E. bacilliformis, E. baltica, E. basistellata, E. bellovacensis, E. bichions, E. bistellata, E. bivittata, E. boirsensis, E. bonettoi, E. brevicaudata, E. brevifilagellum, E. bucharica, E. caballeroi, E. calva, E. cantabrica, E. carterae, E. caudata, E. centralis, E. centrorubra, E. chadefaudii, E. chaetophorina, E. chamberlini, E. charkiensis, E. charkowiense, E. chemichromata, E. chlamydophora, E. chlorodictyon, E. chlorophoenicea, E. choretes, E. cingula, E. circularis, E. clara, E. clavata, E. communis, E. compressa, E. conca vus, E. con fusa, E. contabrica, E. convoluta, E. copula, E. cuvata, E. cyclopicola, E. demulcens, E. deses, E. detonii, E. dikaryon, E. discolor, E. distincat, E. downiae, E. durbanica, E. ecaudata, E. ehrenbergi, E. elastica, E. elenkinii, E. elongata, E. estonica, E. ettlii, E. eutreptia, E. excavata, E. exilis, E. fenestrata, E. flagellata, E. flava, E. foliacea, E. fomicata, E. tracta, E. fundoversata, E. fusca, E. gastrosteus, E. gaumei, E. geniculata, E. gentilis, E. gibbosa, E. globosa, E. gojdicsas, E. gracilis, E. granulata, E. grisoli, E. guttula, E. gymnodinioides, E. haematodes, E. heimii, E. helicoideus, E. heliorubescens, E. hemichromata, E. hiemii, E. hirudo, E. hispidula, E. hyalina, E. iara, E. ignobilis, E. incisa, E. incurva, E. inflata, E. intermedia, E. interrupta, E. intervolans, E. iraci, E. jacira, E. jandira, E. jirovecii, E. juraci, E. kemenesii, E. klebsi, E. korshikovii, E. laciniata, E. laevis, E. tata, E. lepocincloides, E. leucops, E. limnophila, E. limosa, E. longa, E. longicaudata, E. longicaulis, E. longissima, E. longuscula, E. lucens, E. lutaria, E. magnifica, E. maharastrensis, E. mainxi, E. mangenotti, E. mangini, E. matvienkoi, E. megalithus, E. mesnili, E. messula, E. metabolica, E. middelhoekii, E. minima, E. minuta, E. montanensis, E. mucifera, E. mucosa, E. mucronata, E. multiformis, E. mutabilis, E. nana, E. navicula, E. neglecta, E. neustonica, E. oblonga, E. obscura, E. obtusa, E. obtusa-claudata, E. obtusata, E. obtuso-caudata, E. olivacea, E. orientalis, E. orna ta, E. orthia, E. ostendensis, E. oxyuris, E. palmeri, E. paludosa, E. paradoxa, E. parasitica, E. pascheri, E. pavlovskoensis, E. pedunculata, E. penardii, E. physeter, E. pigmaea, E. pisciformis, E. planctonica, E. pleuronectes, E. polymorpha, E. pringsheimii, E. pro wsei, E. proxima, E. pseudochadefaudii, E. pseudoehrenbergii, E. pseudospirogyra, E. pseudostellata, E. pseudoviridis, E. pseudoxyuris, E. pumila, E. purpurea, E. pusilla, E. pyriformis, E. radians, E. ranunculuformis, E. refringens, E. repulsans, E. reticulata, E. retronata, E. rhynchophora, E. rivulariarum, E. robertilamii, E. rostrata, E. rostrifera, E. rubida, E. rubra, E. rustica, E. ruttneri, E. sabulorum, E. sacculiformis, E. satina, E. sanguinea, E. sanguinea, E. scherffelii, E. sciotensis, E. seppiana, E. sessilis, E. sieminskiana, E. simulacra, E. slavjanskiensis, E. sociabilis, E. spadix, E. sphagnicola, E. spinifera, E. spirogyra, E. spiroides, E. splendens, E. srinagari, E. stellata, E. striato-punctata, E. subacutissima, E. subehrenbergii, E. subthinophila, E. sulcata, E. sulcifera, E. synchlora, E. tentans, E. tenuior, E. terricola, E. texta, E. thienemannii, E. thinophila, E. tibetica, E. tiszae, E. torta, E. tripteris, E. tristella, E. truncata, E. truncatula, E. tuba, E. tuberculata, E. undulata, E. univittata, E. utriculus, E. vagans, E. vaginicola, E. van-gloori, E. variabilis, E. velata, E. velveta, E. vermicularis, E. vermiformis, E. vesterbottnica, E. vilmae, E. viridis, E. vittata, E. vivida, E. walneae, E. wangii, E. zocchioi, E. zonalis. Avantageusement selon l'invention les algues du genre Euglena pourront être des algues de l'espèce E. gracilis ou E. viridis. Lorque les microalgues sont du genre Nitzschia, elles pourront être choisies parmi les espèces N. abbreviata, N. abonuensis, N. abridia, N. accedens, N. accommoda ta, N. aciculariformis, N. acicularioides, N. acicularis (dans toutes ces variantes), N. acidoclinata, N. actinastroides, N. actydrophila, N. acula, N. acuminata (dans toutes ces variantes), N. acuta, N. adamata, N. adamatoides, N. adapta, N. adducta, N. adductoides, N. admissa, N. admissoides, N. aequalis, N. aequatorialis, N. aequorea, N. aerophila, N. aerophiloides, N. aestuari, N. affinis, N. africana, N. agnewii, N. agnita, N. alba, N. albicostalis, N. alexandrina, N. alicae, N. allanssonii, N. alpina, N. alpinobacillum, N. amabilis, N. ambigua, N. americana, N. amisaensis, N. amphibia, N. amphibia (dans toutes ces variantes), N. amphibioides, N. amphicephala, N. amphilepta, N. amphioxoides, N. amphioxys (dans toutes ces variantes), N. amphiplectans, N. amphiprora, N. amplectens, N. amundonii, N. anassae, N. andicola, N. angularis (dans toutes ces variantes), N. angulata, N. angustata (dans toutes ces variantes), N. angustatula, N. angustiforaminata, N. aniae, N. antarctica, N. antillarum, N. apiceconica, N. apiculata, N. archibaldii, N. arcuata, N. arcula, N. arcus, N. ardua, N. aremonica, N. arenosa, N. areolata, N. armoricana, N. asperula, N. astridiae, N. atomus, N. attenuata, N. aurantiaca, N. aurariae, N. aurica, N. auricula, N. australis, N. austriaca, N. bacata (dans toutes ces variantes), N. bacillariaeformis, N. bacilliformis, N. bacillum, N. balatonis, N. balcanica, N. baltica, N. barbieri (dans toutes ces variantes), N. barkleyi, N. barronii, N. barrowiana, N. bartholomei, N. bathurstensis, N. bavarica, N. behrei, N. bergii, N. beyeri, N. biacrula, N. bicapitata (dans toutes ces variantes), . bicuneata, N. bifurcata, N. bilobata (dans toutes ces variantes), N. birostrata, N. bisculpta, N. bita, N. bizertensis, N. blankaartensis, N. bombiformis, N. borealis, N. bosumtwiensis, N. braarudii, N. brebissonii (dans toutes ces variantes), N. bremensis (dans toutes ces variantes), N. brevior, N. brevirostris, N. brevissima (dans toutes ces variantes), N. brevistriata, N. brightwellii, N. brittonii, N. brunoi, N. bryophila, N. buceros, N. bukensis, N. bulnheimiana, N. buschbeckii, N. calcicola, N. caledonensis, N. calida (dans toutes ces variantes), N. califomica, N. campechiana, N. capensis, N. capitata, N. capitellata (dans toutes ces variantes), N. capuluspalae, N. camicobarica, N. camico-barica, N. challengeri, N. chalonii, N. chandolensis, N. chardezii, N. chasei, N. chauhanii, N. chungara, N. chutteri, N. circumsuta, N. clarissima, N. clausii, N. clementei, N. clementia, N. clevei, N. closterium (dans toutes ces variantes), N. coarctata, N. cocconeiformis, N. communis (dans toutes ces variantes), N. commutata, N. commutatoides, N. compacta, N. compressa (dans toutes ces variantes), N. concordia, N. confinis, N. con formata, N. con fusa, N. congolensis, N. constricta (dans toutes ces variantes), N. consummata, N. corpulenta, N. costei, N. coutei, N. creticola, N. cucumis, N. cursoria, N. curta, N. curvata, N. curvilineata, N. curvipunctata, N. curvirostris (dans toutes ces variantes), N. curvula (dans toutes ces variantes), N. cuspidata, N. cylindriformis, N. cylindrus, N. dakariensis, N. davidsonii, N. dealpina, N. debilis, N. decipiens, N. delauneyi, N. delicatissima, N. delicatula, N. delognei, N. denticula (dans toutes ces variantes), N. denticuloides, N. desertorum, N. dianae, N. diaphana, N. diducta, N. didyma, N. dietrichii, N. dilata ta, N. diluviana, N. dippelii, N. directa, N. diserta, N. disputa ta, N. dissipa ta (dans toutes ces variantes), N. dissipatoides, N. distans (dans toutes ces variantes), N. distantoides, N. divaricata, N. divergens, N. diversa, N. diversecostata, N. doljensis, N. draveillensis, N. droebakensis, N. dubia (dans toutes ces variantes), N. dubiformis, N. dubioides, N. ebroicensis, N. eglei, N. elegans, N. elegantula, N. ele gens, N. elliptica, N. elongata, N. entomon, N. epiphytica, N. epiphyticoides, N. epithemiformis, N. epithemioides, N. epithemoides (dans toutes ces variantes), N. epsilon, N. erlandssonii, N. erosa, N. etoshensis, N. examinanda, N. eximia, N. famelica, N. fasciculata, N. febigeri, N. ferox, N. ferrazae, N. fibula-fissa, N. filiformis (dans toutes ces variantes), N. flexa, N. flexoides, N. fluminensis, N. fluorescens, N. fluvialis, N. fogedii, N. fonticola (dans toutes ces variantes), N. fonticoloides, N. fonticula, N. fontifuga, N. forfica, N. formosa, N. fossalis, N. fossilis, N. fragilariiformis, N. franconica, N. fraudulenta, N. frauenfeldii, N. frequens, N. frickei, N. frigida (dans toutes ces variantes), N. frustuloides, N. frustulum (dans toutes ces variantes), N. fruticosa, N. fundi, N. fusiformis, N. gaarderi, N. gaertnerae, N. gandersheimiensis, N. garrensis, N. gazellae, N. geitlerii, N. gelida (dans toutes ces variantes), N. geniculata, N. gessneri, N. gieskesii, N. gigantea, N. gisela, N. glabra, N. glacialis (dans toutes ces variantes), N. glandiformis, N. goetzeana (dans toutes ces variantes), N. gotlandica, N. graciliformis, N. gracilis (dans toutes ces variantes), N. gracillima, N. graciloides, N. gradifera, N. graeffii, N. grana, N. grandis, N. granii (dans toutes ces variantes), N. granulata (dans toutes ces variantes), N. granulosa, N. groenlandica, N. grossestriata, N. grovei, N. gruendleri, N. grunowii, N. guadalupensis, N. guineensis, N. guttula, N. gyrosigma, N. habirshawii, N. habishawii, N. hadriatica, N. halteriformis, N. hamburgiensis, N. hantzschiana (dans toutes ces variantes), N. harderi, N. harrissonii, N. hassiaca, N. heidenii, N. heimii, N. hemistriata, N. heteropolica, N. heuflerania, N. heufleriana (dans toutes ces variantes), N. hiemalis, N. hiengheneana, N. hierosolymitana, N. hoehnkii, N. holastica, N. hollerupensis, N. holsatica, N. homburgiensis, N. hudsonii, N. hummii, N. hungarica (dans toutes ces variantes), N. hustedti, N. hustedtiana, N. hyalina, N. hybrida (dans toutes ces variantes), N. hybridaeformis, N. ignorata (dans toutes ces variantes), N. iltisii, N. impressa, N. improvisa, N. incerta, N. incognita, N. inconspicua, N. incrustans, N. incurva (dans toutes ces variantes), N. indica, N. indistincta, N. inducta, N. inflatula, N. ingenua, N. inimasta, N. innominata, N. insecta, N. insignis (dans toutes ces variantes), N. intermedia (dans toutes ces variantes), N. intermissa, N. interrupta, N. interruptestriata, N. invicta (dans toutes ces variantes), N. invisa, N. invisitata, N. iranica, N. irregularis, N. irremissa, N. irrepta, N. irresoluta, N. irritans, N. italica, N. janischii, N. jelineckii, N. johnmartinii, N. juba, N. jucunda, N. jugata (dans toutes ces variantes), N. jugiformis, N. kahlii, N. kanakarum, N. kanayae , N. kavirondoensis, N. kerguelensis, N. kimberliensis, N. kittlii, N. kittonii, N. knysnensis, N. kolaczeckii, N. kotschyi, N. kowiensis, N. krachiensis, N. krenicola, N. kuetzingiana (dans toutes ces variantes), N. kuetzingii, N. kuetzingioides, N. kurzeana, N. kurzii, N. kützingiana (dans toutes ces variantes), N. labella, N. labuensis, N. lacrima, N. lacunarum, N. lacunicola, N. lacus-karluki, N. lacustris, N. lacuum, N. laevis, N. laevissima, N. lagunae, N. lagunensis, N. lamprocampa (dans toutes ces variantes), N. lanceola (dans toutes ces variantes), N. lanceolata (dans toutes ces variantes), N. lancettula, N. lancettuloides, N. lange-bertalotii, N. latens, N. latestriata, N. latiuscula, N. lauenbergiana, N. lauenburgiana, N. lecointei, N. leehyi, N. legleri, N. lehyi, N. leistikowii, N. lesbia, N. lesinensis, N. lesothensis, N. leucosigma, N. levidensis (dans toutes ces variantes), N. liebetruthii (dans toutes ces variantes), N. ligowskii, N. limicola, N. limulus, N. linearis (dans toutes ces variantes), N. lineata, N. lineola, N. linkei, N. lionella, N. littoralis (dans toutes ces variantes), N. littorea, N. longa, N. longicollum, N. longirostris, N. longissima (dans toutes ces variantes), N. lorenziana (dans toutes ces variantes), N. lucisensibilis, N. lunaris, N. lunata, N. lurida, N. luzonensis, N. macaronesica, N. macedonica, N. macera, N. machardyae, N. macilenta (dans toutes ces variantes), N. magnacarina, N. mahihaensis, N. mahoodii, N. maillardii, N. major, N. majuscula (dans toutes ces variantes), N. makarovae, N. manca, N. mancoides, N. manguini, N. margina ta, N. marginulata (dans toutes ces variantes), N. marina, N. martiana, N. maxima, N. media, N. medioconstricta, N. mediocris, N. mediterranea, N. metzeltinii, N. microcephala (dans toutes ces variantes), N. migrans, N. minuta, N. minutissima, N. minutula, N. miramarensis, N. miserabilis, N. mitchelliana, N. modesta, N. moissacensis (dans toutes ces variantes), N. mollis, N. monachorum, N. monoensis, N. montanestris, N. morosa, N. multistriata, N. nana, N. natalensis, N. natans, N. nathorsti, N. navicularis, N. navis-varingica, N. navrongensis, N. neglecta, N. nelsonii, N. neocaledonica, N. neoconstricta, N. neofrigida, N. neogena, N. neotropica, N. nereidis, N. nicobarica, N. nienhuisii, N. normannii, N. notabilis, N. novae-guineaensis, N. novaehollandiae, N. nova-zealandia, N. nyassensis, N. oberheimiana, N. obesa, N. obliquecostata, N. obscura, N. obscurepunctata, N. obsidialis, N. obsoleta, N. obsoletiformis, N. obtusa (dans toutes ces variantes), N. obtusangula, N. oceanica, N. ocellata, N. oliffi, N. omega, N. osmophila, N. ossiformis, N. ostenfeldii var. minor, N. ovalis, N. paaschei, N. pacifica, N. palacea, N. palea (dans toutes ces variantes), N. paleacea, N. paleacea, N. paleacea, N. paleaeformis, N. paleoides, N. palustris, N. pamirensis, N. panduriformis (dans toutes ces variantes), N. pantocsekii, N. paradoxa (dans toutes ces variantes), N. parallela, N. pararostrata, N. partita, N. parvula (dans toutes ces variantes), N. parvuloides, N. paxillifer, N. peisonis, N. pela gica, N. pellucida, N. pennata, N. peragallii, N. perindistincta, N. perminuta, N. perpusilla (dans toutes ces variantes), N. perspicua, N. persuadens, N. pertica, N. perversa, N. petitiana, N. philippinarum, N. pilum, N. pinguescens, N. piscinarum, N. plana (dans toutes ces variantes), N. planctonica, N. plicatula, N. plioveterana, N. polaris, N. polymorpha, N. ponciensis, N. praecurta, N. praefossilis, N. praereinholdii, N. princeps, N. procera, N. prolongata (dans toutes ces variantes), N. prolongatoides, N. promare, N. propin qua, N. pseudepiphytica, N. pseudoamphioxoides, N. pseudoamphyoxys, N. pseudoatomus, N. pseudobacata, N. pseudocapitata, N. pseudocarinata, N. pseudocommunis, N. pseudocylindrica, N. pseudodelicatissima, N. pseudofonticola, N. pseudohungarica, N. pseudohybrida, N. pseudonana, N. pseudoseriata, N. pseudosigma, N. pseudosinuata, N. pseudostagnorum, N. pubens, N. pulcherrima, N. pumila, N. punctata (dans toutes ces variantes), N. pungens (dans toutes ces variantes), N. pungiformis, N. pura, N. puriformis, N. pusilla (dans toutes ces variantes), N. putrida, N. quadrangula, N. quickiana, N. rabenhorstii, N. radicula (dans toutes ces variantes), N. rautenbachiae, N. recta (dans toutes ces variantes), N. rectiformis, N. rectilonga, N. rectirobusta, N. rectissima, N. regula, N. reimerii, N. reimersenii, N. retusa, N. reversa, N. rhombica, N. rhombiformis, N. rhopalodioides, N. richterae, N. rigida (dans toutes ces variantes), N. ritscheri, N. robusta, N. rochensis, N. rolandii, N. romana, N. romanoides, N. romano wiana, N. rorida, N. rosenstockii, N. rostellata, N. rostrata, N. ruda, N. rugosa, N. rupestris, N. rusingae, N. ruttneri, N. salinarum, N. salinicola, N. salpaespinosae, N. salvadoriana, N. sansimoni, N. sarcophagum, N. scabra, N. scalaris, N. scaligera, N. scalpelliformis, N. schoenfeldii, N. schwabei, N. schweikertii, N. scutellum, N. sellingii, N. semicostata, N. semirobusta, N. separanda, N. seriata (dans toutes ces variantes), N. serpenticola, N. serpentiraphe, N. serrata, N. sibula (dans toutes ces variantes), N. sigma (dans toutes ces variantes), N. sigma formis, N. sigmatella, N. sigmoidea (dans toutes ces variantes), N. silica, N. silicula (dans toutes ces variantes), N. siliqua, N. similis, N. simplex, N. simpliciformis, N. sinensis, N. sinuata (dans toutes ces variantes), N. smithii, N. sociabilis, N. socialis (dans toutes ces variantes), N. solgensis, N. solida, N. solita, N. soratensis, N. sp., N. spathulata (dans toutes ces variantes), N. speciosa, N. spectabilis (dans toutes ces variantes), N. sphaerophora, N. spiculoides, N. spiculum, N. spinarum, N. spinifera, N. stagnorum, N. steenbergensis, N. stellata, N. steynii, N. stimulus, N. stoliczkiana, N. stompsii (dans toutes ces variantes), N. strelnikovae, N. stricta, N. strigillata, N. striolata, N. subaccommodata, N. subacicularis, N. subacuta, N. subamphioxioides, N. subapiculata, N. subbacata, N. subcapitata, N. subcapitellata, N. subcohaerens (dans toutes ces variantes), N. subcommunis, N. subconstricta, N. subcurvata, N. subdenticula, N. subfalcata, N. subfraudulenta, N. subfrequens, N. subfrustulum, N. subgraciloides, N. subinflata, N. subinvicta, N. sublae vis, N. sublanceolata, N. sublica, N. sublinearis, N. sublongirostris, N. submarina, N. submediocris, N. subodiosa, N. subpacifica, N. subpunctata, N. subromana, N. subrostrata, N. subrostratoides, N. subrostroides, N. subsalsa, N. subtilioides, N. subtils (dans toutes ces variantes), N. subtubicola, N. subvitrea, N. suchlandtii, N. sulcata, N. sundaensis, N. supralitorea, N. tabellaria, N. taenia, N. taeniiformis, N. tantata, N. tarda, N. taylorii, N. temperei, N. tenella, N. tenerifa, N. tenuiarcuata, N. tenuirostris, N. tenuis (dans toutes ces variantes), N. tenuissima, N. tergestina, N. terrestris, N. terricola, N. thermalis (dans toutes ces variantes), N. thermaloides, N. tibetana, N. tirstrupensis, N. tonoensis, N. towutensis, N. translucida, N. tropica, N. tryblionella (dans toutes ces variantes), N. tsarenkoi, N. tubicola, N. tumida, N. turgidula, N. turgiduloides, N. umaoiensis, N. umbilicata, N. umbonata, N. vacilla ta, N. vacua, N. valdecostata, N. valdestriata, N. valens, N. valga, N. valida (dans toutes ces variantes), N. vanheurckii, N. vanoyei, N. vasta, N. ventricosa, N. vermicularis (dans toutes ces variantes), N. vermicularoides, N. vexans, N. victoriae, N. vidovichii, N. vildaryana, N. villarealii, N. virgata, N. visurgis, N. vitrea (dans toutes ces variantes), N. vivax (dans toutes ces variantes), N. vixnegligenda, N. vonhauseniae, N. vulga, N. weaveri, N. weissflogii, N. westii, N. williamsiii, N. wipplingeri, N. witkowskii, N. wodensis, N. woltereckii, N. wuellerstorfii, N. wunsamiae, N. yunchengensis, N. zebuana, N. zululandica. Avantageusement selon l'invention les algues du genre Nitzschia pourront être des algues choisies parmi les espèces N. sp.. Lorque les microalgues sont du genre Porphiridium, elles pourront être choisies parmi les espèces P. aerugineum, P. cruentum, P. griseum, P. marinum, P. purpureum, P. sordidum, P. violaceum. Avantageusement selon l'invention les algues du genre Porphiridium pourront être des algues choisies parmi les espèces P. aeruginum et cruentum. Lorque les microalgues sont du genre Chlamydomonas, elles pourront être choisies parmi les espèces C. aalesundensis, C. abbreviata, C. acidophila, C. acies, C. actinochloris, C. aculeata, C. acuminata, C. acuta, C. acutata, C. acuteovalis, C. acutiformis, C. acutissima, C. aequabilis, C. aestivata, C. africana, C. agametos, C. agloeformis, C. akimovii, C. alaskensis, C. alata, C. alatapapilla, C. albo-viridis, C. allensworthii, C. allorgei, C. alpina, C. altera, C. alveolata, C. ambigua, C. ametastatos, C. amici-mei, C. amoena, C. amplissima, C. ampulla, C. anglica, C. angulosa, C. annula ta, C. antarcticus, C. anticontata, C. anulata, C. anuraea, C. apex, C. apiangulata, C. apicala, C. apiculata, C. apiocystiformis, C. appendiculata, C. applanata, C. arachne, C. arctoalpina, C. areolata, C. armata, C. asiatica, C. asterosperma, C. astigmata, C. asymmetrica, C. atactogama, C. attenuata, C. augustae, C. autumnalis, C. bacca, C. baccata, C. bacillaris, C. bacillus, C. badensis, C. ballenyana, C. basimaculata, C. basistellata, C. basistigmata, C. bebaryana, C. bella, C. bergii, C. bemardinensis, C. biarticulata, C. bicaudata, C. bichlora, C. biciliata, C. bicocca, C. biconica, C. bicon vexa, C. bifrons, C. bila tus, C. bipapillata, C. bipartita, C. biverruca, C. blatnensis, C. boldii, C. bolyaiana, C. botryodes, C. botryopara, C. botrys, C. botulus, C. bourrellyi, C. brachyura, C. brannonii, C. braunii, C. breviciliata, C. brezoviensis, C. bulla ta, C. bullosa, C. burchallii, C. bursiculaeformis, C. calatelensis, C. calcicola, C. callosa, C. callunae, C. calyptrata, C. calyptrocarpa, C. capitata, C. capitis, C. caput-sepiae, C. carolii, C. carpatica, C. carrizoensis, C. caucasica, C. caudata, C. cava, C. cavanillesiana, C. celerrima, C. chadefaudii, C. characioides, C. chlamydogama, C. chlorastera, C. chlorogoniella, C. chlorogonioides, C. chlorolobata, C. chodati, C. cholnokii, C. christensenii, C. chrysomonadis, C. cienkowskii, C. cistula, C. citriformis, C. clavata, C. closter, C. coccoides, C. communis, C. compacta, C. complanata, C. completa, C. composita, C. concinna, C. concordia, C. concrescens, C. con finis, C. conica, C. coniformis, C. conjungens, C. conochilae, C. conocylindrus, C. conoides, C. constricta, C. contexa, C. conversa, C. con vexa, C. cordiformis, C. comuta, C. corrosa, C. corticata, C. corticatiformis, C. costata, C. crassa, C. crassicauda, C. cristata, C. cucculata, C. cuneata, C. curvicauda, C. cyanea, C. cylindrica, C. cylindrocystiformis, C. cylindrus, C. dactylococcoides, C. dalecarlica, C. damasii, C. dan geardiana, C. dangeardii, C. danica, C. dauciformis, C. debaryana, C. de-baryana, C. decipiens, C. deludens, C. depressa, C. desmidii, C. detata, C. dictyosphaeriae, C. difficilis, C. diffusa, C. dilatata, C. dillii, C. dinobryonii, C. discifera, C. dissimilis, C. distracta, C. doliolum, C. dorsoventralis, C. dresdensis, C. duplex, C. durbanica, C. dysosmos, C. ehrenbergii, C. elegans, C. elliptica, C. elongatum, C. emaculata, C. endogloea, C. enteromorphae, C. epibiotica, C. epiphytica, C. epizootica, C. epsilon, C. eradians, C. eriense, C. ettlii, C. euchlorum, C. eudorinae, C. eugametos, C. euglenaeformis, C. eupapillata, C. euryale, C. eustigma, C. eustigmata, C. excentrica, C. fallax, C. fascia ta, C. fenestrata, C. ferrophila, C. fiscina, C. fissa, C. flavovirens, C. flosaquae, C. flosculariae, C. fluvialis, C. fonticola, C. foraminata, C. formosissima, C. fossalis, C. fottii, C. foveola, C. foveolarum, C. foveolata, C. fragilis, C. franki, C. franzei, C. friedmannii, C. frigida, C. fritschiana, C. fungicola, C. fusus, C. gallica, C. geminata, C. gerloffii, C. gibberula, C. glacialis, C. glans, C. globosa, C. globulosa, C. globus, C. gloeogama, C. gloeopara, C. gloeophila, C. gordalensis, C. goroschankini, C. i.o gracilis, C. grandis, C. grandistigma, C. granula ta, C. granulosa, C. gregaria, C. grintzescui, C. grovei, C. guizhounensis, C. gutta, C. gymnogyne, C. gyroides, C. gyrus, C. haematococcoides, C. hallensis, C. halophila, C. hartmanni, C. hebes, C. hedleyi, C. heimii, C. hemigymnos, C. hennessyi, C. heterogama, C. heverlensis, C. hexangularis, C. hiberna, C. hiemalis, C. holdereri, C. hovassei, 15 C. huberi, C. humicola, C. hyalina, C. hydra, C. hypermaculata, C. hyperpapillata, C. hyperstigmata, C. hypolimnica, C. imitans, C. immobilis, C. inaequalis, C. incerta, C. incisa, C. inconstans, C. incrassata, C. incurvata, C. inermis, C. inertis, C. inflexa, C. inhabilis, C. insana, C. insolita, C. intermedia, C. inversa, C. involucrata, C. irregularis, C. isabeliensis, C. isogama, C. 20 iyengari, C. jemtlandica, C. kakosmos, C. kirchneriellae, C. klebsii, C. klinobasis, C. kniepii, C. kochii, C. koishikavensis, C. komarekii, C. komma, C. koprophilos, C. kronauensis, C. kuteinikowii, C. kuwadae, C. kvildensis, C. lacustris, C. laeve, C. lagenula, C. languida, C. lapponica, C. lata, C. lateralis, C. lateritia, C. latifrons, C. leiostraca, C. tenta, C. leptobasis, C. leptochaete, C. 25 leptos, C. lewinii, C. libera, C. libonica, C. limosa, C. lismorensis, C. lobulata, C. longeciliata, C. longeovalis, C. longirubra, C. longistigma, C. loricata, C. lunata, C. lunatopyrenoidea, C. lundii, C. lunulatiformis, C. macroplastida, C. macropyrenoidosa, C. macrostellata, C. macrostigma, C. madraspatensis, C. magnusii, C. magurensis, C. manshurica, C. maramuresensis, C. marina, C. 30 marsupium, C. marvanii, C. matwienkoi, C. media, C. mediocris, C. mediostigmata, C. melanospora, C. meslinii, C. metapyrenigera, C. metastigma, C. meyeri, C. microcystiae, C. microhalophila, C. micropapillata, C. microscopica, C. microsphaera, C. mikroplankton, C. mimina, C. minor, C. minuta, C. minutissima, C. moewusii, C. monadina, C. monoica, C. monpulsata, C. montana, C. monticola, C. moorei, C. mucicola, C. muciphila, C. multigranulis, C. multiplex, C. multipyrenoidosa, C. multitaeniata, C. muriella, C. muscicola, C. musculus, C. mutabilis, C. nannostigma, C. napocensis, C. nastrochloris, C. nasus, C. nasuta, C. navicularis, C. neinhardii, C. neoplanoconvexa, C. nephroidea, C. nitens, C. nivalis, C. noctigama, C. nomadina, C. nonpulsata, C. nova, C. novaezealandiae, C. nygaardii, C. obergurglii, C. obesa, C. obliqua, C. oblonga, C. oblusa, C. obovata, C. 113 oboviformis, C. obscura, C. obtusa, C. obversa, C. ocellata, C. ohioensis, C. oleosa, C. olifaniae, C. oligochloris, C. oligothermica, C. oocysticola, C. oogamum, C. operuclata, C. opisthostigma, C. opulenta, C. orbicularis, C. oscillans, C. ovalis, C. ovata, C. oviformis, C. pachychlamys, C. palatina, C. palatina, C. palla, C. pallens, C. pallida, C. pallidostigmatica, C. paludosa, C. 15 papillata, C. parallelistriata, C. paramucosa, C. parietaria, C. parisii, C. parkeae, C. partita, C. parvula, C. pascheriana, C. passiva, C. patellaria, C. paupera, C. paupercula, C. pedalii, C. pelophila, C. penioides, C. penium, C. pennata, C. perforato-striata, C. perigranulata, C. peritopos, C. perpusilla, C. pertusa, C. pertyi, C. petasus, C. peterfii, C. phaseolus, C. philothermos, C. pigra, C. pila, 20 C. pila, C. piriformis, C. pirum, C. pisiformis, C. pisum, C. pitschmannii, C. pitschmannii, C. plancon vexa, C. planctogloea, C. planocon vexa, C. platyrhyncha, C. platystigma, C. plena, C. plethora, C. pluviale, C. poljanskii, C. polychloris, C. polydactyla, C. polypyrenoides, C. porosa, C. praecox, C. primo yens, C. printzii, C. proboscigera, C. procera, C. prokudinii, C. prolifera, C. 25 proteus, C. protracta, C. provasolii, C. pseudagloé, C. pseudeugametos, C. pseudintermedia, C. pseudobadensis, C. pseudocaeca, C. pseudococcum, C. pseudocon vexa, C. pseudocostata, C. pseudodangeardii, C. pseudodistracta, C. pseudoelegans, C. pseudoelliptica, C. pseudoepiphytica, C. pseudofonticola, C. pseudogloeogama, C. pseudohaematococcoides, C. pseudolunata, C. 30 pseudomacrostigma, C. pseudomicrosphaera, C. pseudomutabilis, C. pseudopertusa, C. pseudopertyi, C. pseudopolypyrenoidea, C. pseudoprotracta, C. pseudopulsa tilla, C. pseudorecta, C. pseudoregularis, C. pseudoreticulata, C. pseudorotula, C. pseudostellata, C. pseudotarda, C. pseudotetraolaris, C. pseudotubulosa, C. pteromonoides, C. pulchra, C. pulsatilla, C. pulvinata, C. pulvisculus, C. pumilio, C. pumilioniformis, C. punctum, C. pusilla, C. pygmaea, C. pyramidalis, C. pyrenobractea, C. pyrenodiscus, C. pyrenogeiton, C. pyriformis, C. quadrilobata, C. quiescens, C. radiata, C. radiosa, C. ranula, C. rapa, C. rapida, C. rattuli, C. raudensis, C. recta, C. reginae, C. regularis, C. reinhardtii, C. reisiglii, C. reniformis, C. retrona tans, C. retro versa, C. rhigophilos, C. rhinoceros, C. rhomboidalis, C. rhopaloides, C. rigensis, C. rigophilos, C. rima, C. romanica, C. rosae, C. rostrata, C. rotifera, C. rotula, C. rotunda, C. rubrifilum, C. rudolphiana, C. rugosa, C. sacculiformis, C. saccus, C. sagene, C. sagittula, C. salinophila, C. salviniae, C. sanguinea, C. saxonensis, C. scalpriformis, C. scarabaeus, C. schilleriana, C. schizochlora, C. scintillans, C. scutula, C. sectilis, C. securis, C. sedlicensis, C. semiampla, C. serbinowi, C. sessilis, C. sestinensis, C. shawii, C. sichuanensis, C. siderogloea, C. sigmoidea, C. silesiae, C. similis, C. simplex, C. simulans, C. simulans, C. sinica, C. skujae, C. skvortzowiana, C. smithiana, C. smithii, C. snowiae, C. snowii, C. soederi, C. solida, C. soosensis, C. sordida, C. speciosa, C. sphaera, C. sphagnicola, C. sphagnophila, C. spinifera, C. spinosa, C. spirochloris, C. spirogyroides, C. splendida, C. spreta, C. springeri, C. squalens, C. stagnalis, C. stagnophila, C. starrii, C. steinii, C. stellata, C. stelliformis, C. stercoraria, C. stigmata, C. strepta, C. stria ta, C. striola tus, C. strohschneideri, C. subanguliformis, C. subangulosa, C. subannulata, C. subasymmetrica, C. subcaudata, C. subcomposita, C. subconica, C. subcylindrica, C. subehrenbergii, C. subfusiformis, C. submarina, C. suboogama, C. subradiata, C. subreticulata, C. subtils, C. sungariensis, C. superiora, C. surtseyiensis, C. svitaviensis, C. sylvicola, C. synoica, C. tarda, C. tatrica, C. taurangensis, C. tauros, C. tecta, C. tenebraria, C. teodorescui, C. teractidis, C. terrestris, C. terricola, C. testudo, C. tetrabaena, C. tetrachloris, C. tetragama, C. tetraolaris, C. tetras, C. tetravacuolata, C. texensis, C. thiophila, C. thomassonii, C. tin gens. C. tomensis, C. toveli, C. tremulans, C. triangularis, C. triplicanensis, C. trulla, C. truncata, C. tuberosa, C. tubulata, C. tumida, C. turicensis, C. typica, C. ucrainica, C. uglanii, C. ulla, C. ulotrichae, C. ulvaensis, C. umbonata, C. urceolata, C. uva-maris, C. vacuolata, C. van-straelenii, C. varians, C. vectensis, C. venusta, C. vemalis, C. versicolor, C. vestita, C. vibra tilis, C. virgata, C. viridemaculata, C. viastae, C. volvocicola, C. vorhiesi, C. vulgaris, C. waldenburgensis, C. wuhanensis, C. yellowstonensis, C. zebra, C. zero vii, C. zygnemoides. Avantageusement selon l'invention les algues du genre Chlamydomonas pourront être des algues de l'espèce C. reinhardtii. Lorque les microalgues sont du genre Stephanodiscus, elles pourront être choisies parmi les espèces S. aegyptiacus, S. agassizensis, S. akanensis, S. alpinus, S. asteroides, S. astraea, S. atmosphaerica, S. balatonis, S. balticus, S. bellus, S. berolinensis, S. biharensis, S. bina tus, S. binderanus, S. biserialis, S. biwensis, S. bramaputrae, S. carconensis, S. carpathica, S. conspicueporus, S. costatilimbus, S. damasii, S. delicatus, S. densus, S. dubius, S. dzhilindus, S. elegans, S. entzii, S. epidendrum, S. excentricus, S. exiguus, S. fenestralis, S. formosus, S. fossilis, S. galileensis, S. gayhartianus, S. gravitoides, S. hamadryas, S. hantzschi, S. hantzschianus, S. hantzschii, S. heterostylus, S. incognitus, S. inconspicuus, S. invisitatus, S. irregularis, S. jamsranii, S. kanitzii, S. khurseviczae, S. komoroensis, S. kuetzingii, S. kutzingiana, S. linea tus, S. lucens, S. major, S. makarovae, S. margina tus, S. matrensis, S. medius, S. minor, S. minuta, S. minutulus' S. minutus, S. miyagiensis, S. mongolicus, S. muelleri, S. nativus, S. nemanensis, S. neoaegypticus, S. neoastraea, S. nia garae, S. nipigonensis, S. novaezeelandiae, S. omarensis, S. oregonica, S. sp., S. pantocsekii, S. parvus, S. perfora tus, S. ponticus, S. popovskayae, S. prohantzschii, S. pseudosuzukii, S. puicherrimus, S. punctatus, S. pusillus, S. radia tus, S. rhombus, S. robustus, S. rotula, S. rugosus, S. sinensis, S. skabitschevskyi, S. socialis, S. soochowensis, S. speciosus, S. subsalsus, S. subtils, S. subtranssylvanicus, S. sudanensis, S. superiorensis, S. suzukii, S. symbolophora, S. tenuis, S. transsylvanicus, S. triporus, S. triporus, S. vesiculosus, S. vestibulis, S. volgensis, S. yellowstonensis, S. yukonensis, S. zachariasi. Avantageusement selon l'invention les algues du genre Stephanodiscus pourront être des algues de l'espèce S. astraea ou S. sp.. Lorque les microalgues sont du genre Monoraphidium, elles pourront être choisies parmi les espèces M. affixum, M. arcuatum, M. braunii, M. capricomutum, M. carybeum, M. circinale, M. contortum, M. con volutum, M. dybowskii, M. flexuosum, M. fontinale, M. griffithii, M. indicum, M. intermedium, 5 M. irregulare, M. komarkovae, M. littorale, M. longiusculum, M. lunare, M. minutum, M. mira bile, M. neglectum, M. obtusum, M. pseudobraunii, M. pusillum, M. raphidioides, M. saxatile, M. setiforme, M. skujae, M. sp., M. subclavatum, M. terrestre, M. tortile. Avantageusement selon l'invention les algues du genre Monoraphidium pourront être des algues de l'espèce M. sp.. 10 Le procédé algal de traitement des eaux usées développé dans ce brevet comprend au moins : - une première étape de dénitrification et de séparation des composants solides des eaux usées, étape qui peut être réalisée dans un bassin de décantation, avantageusement disposé en amont du bassin de 15 culture des microalgues, - une deuxième étape de dépollution des eaux par culture d'algues, avantageusement fixées sur des moyens de fixations, au cours de laquelle les nutriments et les métaux lourds seront retirés des eaux à traiter par la culture des algues, étape qui peut être réalisée dans un bassin de culture des algues 20 ou raceway, éventuellement muni d'au moins un moyen de régulation de la température et/ou d'au moins un moyen d'éclairage et/ou d'au moins un moyen de recirculation des eaux destiné à renvoyer l'eau du bassin de culture dans le bassin de décantation situé en amont pour créer une recirculation des eaux à traiter afin d'en améliorer essentiellement la dénitrification ; 25 - une troisiéme étape de séparation des eaux traitées et des algues, étape qui peut être réalisée dans un bassin de séparation avantageusement situé en aval du bassin de culture. A l'issue de ces trois étapes les eaux traitées et les algues peuvent être utilisées directement ou pour subir d'autres traitements afin de les recycler. 30 Par exemple l'eau peut être rendue potable par les différents traitements classiques de potabilisation de l'eau. De même les algues pourront par exemple être valorisées en - hydrocarbures : certaines souches, notamment celles du genre Botryococcus peuvent produire des molécules intéressantes valorisables en chimie verte : n-alkadienes, mono-, tri-, tétra-, et pentaènes, qui sont produits à partir d'acides gras (ex : C27 diene ; C30 botryococcene ; squalène ; tetraméthylsqualène). Ces molécules peuvent représenter jusqu'à 60% de la masse sèche de la cellule algale. Cette souche peut produire également un tétraterpène connu sous le nom de licopadiène qui peut constituer jusqu'à 2 à 8% de la biomasse sèche. Botryococcus peut aussi produire des botryococcenes polyméthylés (C30-C37). - lipides (triglycérides et acides gras) utilisables en biocarburant à partir de la biomasse développée dans le bassin. A cet égard si l'on désire favoriser ce type de valorisation on privilégiera l'injection de carbone (rapport C/N>20) et son assimilation pour orienter la culture sur une synthèse de lipides. - polysaccharides comme les exopolysaccharides sulfatés produits 15 par les souches du genre Porphiridium, par exemple les souches de l'espèce Porphiridium aeruginum. - plus classiquement et préférentiellement, en polysacharrides de type amidon, cellulose, pectine, chitine, hémicellulose ; polyosides qui eux mêmes sont transformables et fermentescibles en bioéthanol. 20 Cependant comme précédement souligné, ces procédés de traitement des eaux usées par culture d'algues présentent un problème puisque au cours du traitement la quantité d'algues diminue ce qui peut avoir comme conséquence la diminution de l'efficacité du taux de dépollution des eaux usées à traiter. 25 L'invention propose de pallier ce problème en introduisant régulièrement, voire de manière continue, de nouvelles souches d'algues préalablement précultivées en fermenteurs et injectées dans le milieu à dépolluer dans le bassin de culture d'un dispositif de traitement des eaux usées par culture d'algue. 30 Par régulièrement on entend dans le présent texte que l'injection des microalgues dans le bassin de culture ne se fait pas en continue mais soit à des périodes prédéfinies du procédé de culture des algues donc du procédé de traitement des eaux usées soit à la demande c'est-à-dire lorsqu'il est jugé par un opérateur ou éventuellement par un moyen de contrôle automatique, qu'il est nécessaire d'ajouter des algues au milieu de culture. Par continu on entend dans le présent texte que l'injection des microalgues dans le bassin de culture se fait sans période d'interruption de l'injection des algues précultivées dans le fermenteur. Ainsi selon l'invention, les souches d'algues précultivées pourront être injectées régulièrement dans le bassin où se produira la dépollution en CO2, de carbone organique et des nutriments à dépolluer (NH4+ ; NO3- ; P043-). La fréquence d'ajout pourra se faire en fonction des temps de génération des souches. Ainsi l'invention concerne un procédé de traitement des eaux usées par culture d'algues dans lesdites eaux usées à traiter comprennant au moins une première étape de dénitrification et de séparation des composants solides des eaux usées à traiter, une deuxième étape de dépollution des eaux issues de la première étape par culture des algues, lesdites algues pouvant être avantageusement fixées sur des moyens de fixations, une troisiéme étape de séparation des eaux traitées issues de la deuxième étape et des algues, caractérisé en ce que l'on injecte dans le milieu de cultures des algues dans le bassin de culture, régulièrement ou en continu, des souches d'algues prélablement précultivées dans un fermenteur. Avantageusement ladite injection pourra être faite au cours de la deuxième étape du procédé de traitement des eaux usées par culture d'algues. Selon une variante du procédé de l'invention ledit fermenteur peut être avantageusement physiquement relié audit bassin de culture par tout moyen de liaison. Dans cette variante il est possible d'envisager que le dispositif dans lequel le procédé est mis en oeuvre inclut en outre tout moyen de contrôle de la culture et en particulier un ou des moyen(s) permettant de contrôler l'injection des microalgues précultivées dans le milieu de culture. Selon l'invention les conditions de culture des souches d'algues dans le fermenteur pourront être les conditions habituelles connues et utilisées pour cultiver les souches d'algues utilisées. Avantageusement on utilisera les 302 3 5 4 8 27 conditions qui permettront le meilleur rendement en souches d'algues au stade désiré pour leur injection dans le milieu de culture à savoir des algues en phase de croissance, avantageusement des algues en début de phase de croissance, très avantageusement des algues en fin de phase de latence. 5 En fin de phase de préculture, l'opérateur vérifiera qu'il ne reste peu ou pas d'éléments carbonés, azotés ou phosphorés dans le milieu de culture des algues contenu dans le fermenteur. Ces éléments solubles auront été consommés et l'opérateur vérifiera que le carbone organique ne subsiste par exemple qu'à une quantité «10g/L ; que l'azote total dissous ne subsiste par 10 exemple qu'à une quantité Ainsi pour augmenter d'un log la quantité de cellules actives dans le bassin, il faudra produire dans le fermenteur une biomasse présentant une concentration totale moyenne de 2 à 5 log, avantageusement de 3 à 4 log, de plus que la concentration totale moyenne des souches du milieu de culture contenu dans le bassin de culture utilisé pour le procédé selon l'invention. A titre d'exemple pour un bassin de 100m3, il faudra un fermenteur de 100 litres, capable de produire les souches en une concentration totale moyenne 3 log de plus que dans le bassin. Mais bien entendu l'homme du métier saura adapter la concentration de la biomasse ajoutée en fonction des souches utilisées afin de respecter les rapports désirés pour atteindre l'objectif souhaité d'augmenter la concentration dans le bassin de culture d'au moins un log. Selon une variante, quand le procédé selon l'invention inclut l'utilisation de moyens de fixation des algues, il pourra être avantageux que l'injection des microalgues précultivées puisse être réalisée au niveau desdits moyens de fixation des microalgues afin que les microalgues précultivées injectées se fixent dans les meilleurs délais auxdits moyens de fixation. Le niveau du bassin pourra alors être baissé et les algues seront injectées directement sur les supports. La mise en contact des algues avec leur support se fera sur environ une à deux heures, laissant le temps aux algues de se fixer sur les supports. Une carence en azote dans le milieu de préculture favorisera aussi la production de polysacharrides permettant ainsi à l'algue de se fixer sur les supports. Une fois que les algues seront fixées sur les supports, le niveau du bassin sera remonté, le raceway sera ensuite alimenté en continu par des eaux usées brutes, préférablement prétraitées. Comme indiqué précedement il peut être avantageux que les microalgues soient fixées à un support lui-même immergé dans le bassin de culture. Ainsi le procédé selon l'invention pourra mettre avantageusement en 30 oeuvre des microalgues fixées sur un support. Tout moyen connu pour fixer les microalgues pourra être utilisé selon le procédé de l'invention. Ledit moyen de fixation pourra être de tout type, en toute matière, de toute forme et de tout volume, compatibles avec la fonction pour laquelle ledit moyen de fixation est utilisé selon le procédé de l'invention. Avantageusement ledit moyen de fixation des microalgues pourra être en une matière poreuse comme par exemple la pouzzolane, la vermiculite, la perlite ou encore les polyuréthanes, des billes d'alginates ; du carraghénane ; des résines de polyéthylène à grande surface spécifique (m2/m3 supérieur à 50 ; exemple éléments Bio Hel-X)) ; billes de silicate ; coquilles d'huîtres préférentiellement la vermiculite ; la pouzzolane et les résines de polyéthylènes à grande surface spécifique. Selon le procédé de l'invention, lesdits moyens de fixation pourront être utilisés en suspension dans l'eau ou conditionnés dans des sacs grillagés qui permettront de retenir les supports et donc les souches. Selon encore le procédé de l'invention le volume occupé par lesdits moyens de fixation pourra aller de 1% à 50% du volume du bassin, préférentiellement 2%, 5% ou 10%. Selon le procédé selon l'invention, la température du milieu de culture pourra être maintenue à la température à laquelle les souches utilisées présentent un maximum de croissance. L'homme du métier saura sans difficulté adapter la température utilisée selon le procédé de l'invention à la souche utilisée. Avantageusement la température du milieu de culture ou de l'eau usée peut être comprise entre 10°C et 30°C, avantageusement entre 20°C et 30°C. Comme également indiqué précédement il peut être avantageux que le procédé selon l'invention inclut un éclairage du milieu de culture afin d'optimiser la croissance des algues et par là même l'efficacité du traitement des eaux usées. Selon l'invention l'éclairage du milieu de culture pourra être réalisé en continu ou de manière discontinue. On comprend que l'homme du métier saura adapter les périodes d'éclairage non seulement aux besoins de la souche utilisée selon le procédé mais également en fonction de l'éclairage naturel auquel est soumis le bassin de culture du dispositif de traitement des eaux usées dans lequel le procédé selon 'linvention est mis en oeuvre. Selon une variante de l'invention le procédé pourra s'adresser de préférence à des microalgues mixotrophes, et les composés qu'elles contiennent de type amidon, cellulose, pectine, chitine, hémicellulose, soient transformables et fermentescibles en bioéthanol. Les exemples qui suivent illustrent la présente demande sans toutefois la limiter. Exemple 1 : intérêt d'immobiliser les souches Objectifs des essais : Démontrer l'avantage d'immobiliser des cellules dans un milieu pollué au CO2 et en azote dissous. i.o Méthodologie : Les essais suivants ont été conduits sur les souches Chlorelle vulgaris (temps de génération optimal : 3,5h, en mixotrophie, Ogawa & Aiba, 1981) et Botryococcus braunii (temps de génération optimal : entre 50 et 60h, A. Lemonnier, 2013). Des précultures de ces souches sur milieux optimisés ont été 15 réalisées au préalable en erlenmeyers simulant l'effet d'une culture en fermenteur. Les souches, en phase de croissance ont ensuite été inoculées sur un support constitué de vermiculite à différentes concentrations : 0% (témoin support sans souche) ; 0,5% (en % de vermiculite par rapport au poids du 20 milieu à dépolluer) ; 1% et 2%. Ces supports contenant les microalgues fixées ont ensuite été immergées dans d'autres erlenmeyers contenant le mélange dioxyde de carbone et eaux usées domestiques. La composition de l'effluent a dépollué est la suivante : Milieu synthétique initial : "eau usée reconstituée + bicarbonates = équivalent CO2 Eléments Concentration Remarques Gamme de polluants de l'élément concentration polluant Carbone Carbone minéral 489 mg 55 à 550 mg dissous, CO2 CO2/L CO2/L dissous Azote Azote total 27, 5 mg Nt/L 20 à 100 mg Nt/L Azote 27,1 mg N- 2 à 47 mg N- ammoniacal NH4/L NH4/L Azote nitrique ( Les éléments du tableau ont été dosés par un spectrophotomètre Hach Lange DR 3900 et des kits de dosages des différents éléments. Un suivi de la composition du milieu de culture a été fait en début et en fin de manipulation (cf résultats). Conditions d'expérience Température 22 °C Agitation 150 tours/mn Lumière Néon gros lux Incubateur Type Innova Résultats : Souche Chlorelle vulgaris : Mise en culture sur eau usée reconstituée + bicarbonates, inoculation avec une préculture à 5 % (volume/volume). Début de culture tO = 0 h Fin de culture tf = 120 h Pourcentage de vermiculite (masse/masse) dans le milieu 0 ,5°/0 ajouté 1% 2% 0% (Témoin) Carbone Carbone minéral dissous à tO (en mg CO2/L) 489 489 489 489 Carbone minéral dissous à tf (en mg CO2/L) 487 443 439 33110 Azote Azote total soluble à tO (mg Nt/L) 27,45 27,45 27,45 27,45 Azote total soluble à tf 24,4 11,29 6,04 0,649 (mg Nt/L) Azote ammoniacal à tO 27,1 27,1 27,1 27,1 (mg N-NH4/L) Azote ammoniacal à tf 12,6 9,52 6,04 0,417 (mg N-NH4/L) Azote nitrique à tO (mg N-NO3/L) 0,35 0,35 0,35 0,35 Azote nitrique à tf (mg N-NO3/L) 11,8 1,77 0 0,232 Phosphore Phosphate à tO (mg P-PO4/L) 16,1 16,1 16,1 16,1 Phosphate à tf (mg P-PO4/L) 17,8 17,6 16,4 16 Demande Chimique en Oxygène DCO tO (mg 02/L) 190 190 190 190 DCO tf (mg 02/L) 177 164 176 176 pH TO (Unité pH) 8 8 8 8 Tf (Unité pH) 8 8 9 à 10 9 à 10 Conclusion : On constate que plus on met de support dans le milieu, plus la dépollution (ou consommation) de carbone (CO2) et d'azote dissous (azote total dissous, azote ammoniacal), est efficace. La vermiculite a un effet positif aussi sur l'adsorption d'azote ammoniacal et l'absorption d'azote nitrique. La dépollution est plus importante en fin de culture à 2% de vermiculite qu'à 1`)/0 qu'à 0,5% que le témoin. Il n'y a pas d'effet observé sur le phosphore. Hypothèse d'interprétation : Plus on ajoute de support dans le milieu, plus les souches peuvent se fixer à la vermiculite et plus la dépollution en carbone et azote est efficace.15 Souche Botryococcus braunii : Mise en culture sur eau usée reconstituée + Remarques bicarbonates, inoculation avec une préculture à 15 % (volume/volume). Pourcentage de vermiculite ajouté dans le milieu (masse/masse) 0% 0 '5% 1% 2% (Témoin) Carbone Carbone minéral 489 489 489 489 dissous à Oh (en mg CO2/L) Carbone minéral 428 422 468 299 dissous à 216h (en mg CO2/L) Carbone minéral dissous à 217h (en mg CO2/L) Carbone minéral 408 398 359 356 dissous à 384h (en mg CO2/L) Carbone minéral dissous à 816h (en mg CO2/L) Azote Azote total soluble à Oh (mg Nt/L) 27 27 27 27 Azote total soluble à 216h 57 70 84 83 (mg Nt/L) Azote total soluble à 216h + ap ajout val max 82 95 109 108 Valeur (mg Nt/L) calculée maximum après ajout Azote total soluble à 384h 63 66 93 98 (mg Nt/L) Azote total soluble à 816h 102 91 109 113 Lyse (mg Nt/L) cellulaire en fin de culture ? Azote ammoniacal à Oh 27,1 27,1 27,1 27,1 (mg N-NH4/L) Azote ammoniacal à 216h 21,5 23,5 22,5 22,2 (mg N-NH4/L) Azote ammoniacal 24,1 26,1 25,1 24,8 Valeur à 216 + ap ajout val max calculée (mg N-NH4/L) maximum après ajout Azote ammoniacal à 384h 23,0 20,8 8,8 9,8 (mg N-NH4/L) Azote ammoniacal à 816h 6,56 0 5,08 5,8 (mg N-NH4/L) Azote nitrique à Oh (mg N-NO3/L) 0,35 0,35 0,35 0,35 Azote nitrique à 0,344 0,001 0,142 0,186 216h (mg N-NO3/L) Azote nitrique à 38 38 38 38 Valeur 216 + ap ajout val max calculée (mg N-NO3/L) maximum après ajout Azote nitrique à 42,6 43,5 52,7 54,6 384h (mg N-NO3/L) Azote nitrique à 47,5 49,8 57,2 58,4 816h (mg N-NO3/L) Phosphore Phosphate à Oh (mg P-PO4/L) 16 16 16 16 Phosphate à 216h (mg P-PO4/L) 26 26,6 29,4 28,4 Phosphate à 216h + ap ajout val max (mg P-PO4/L) 35 36 39 38 Valeur calculéemaximum après ajout Phosphate à 384h (mg P-PO4/L) 32 29 33 33 Phosphate à 816h (mg P-PO4/L) 39,3 36,8 40 41,5 Demande DCO à Oh (mg 190 190 190 190 Chimique 02/L) en Oxygène DCO à 216h (mg 02/L) 178 173 171 174 DCO à 216h + ap ? ? ? ? ajout val max (mg 02/L) DCO à 384h (mg 02/L) 174 180 171 178 DCO à 0816h (mg 02/L) 887 767 822 823 Lyse cellulaire en fin de culture ? pH pH à Oh (Unité pH) 8 8 8 8 pH à 216h (Unité pH) 8 8 8 8 pH à 216h + ap ? ? ? ? ajout val max (Unité pH) pH à 384h (Unité pH) 8 7 à 8 7 à 8 8 pH à 816h (Unité pH) 8 8 8 8 N.B : Un ajout de botryococcus braunii a été fait à 216h pour booster la dépollution, cet ajout contient des éléments azotés et phosphorés, les valeurs de concentration en ces éléments ont été calculées après ajout de la souche et du milieu de culture associé. On constate que plus on met de support dans le milieu, plus la dépollution (ou consommation) de carbone (CO2) et d'azote dissous (azote total dissous, azote ammoniacal), est efficace. La vermiculite a effet positif aussi sur l'adsorption d'azote lo ammoniacal et azote nitrique. La dépollution est plus importante en fin de culture à 2% de vermiculite qu'à 1`)/0 qu'à 0,5% que le témoin. Il n'y a pas d'effet observé sur le phosphore. Hypothèse d'interprétation : Plus on ajoute de support dans le milieu, 15 plus les souches peuvent se fixer à la vermiculite et plus la dépollution en carbone et azote est efficace. D'autre part, les souches citées dans ce brevet, peuvent être précultivées en fermenteur avec de fortes densités cellulaires, le tableau suivant reprend les différentes souches ainsi que leur densité cellulaire 20 associée : Temps de Nombre Temps de génération en de cellules (en culture pour Souches conditions nombre de cellule atteindre le optimales /mL)/Densité début de la mixotrophes Optique (DO) phase expo Botryococcus 48-72h DO (par OD -300h, braunii scanner) : 3-4 si taux Correspondant à 3 g inoculation = de Matières sèches 10% /L Chlorella 4-10h 1x106 à 1x108 12 à 24h vulgaris, Chlorella sorokiniana Scenedesmus 10-24h Environ 1x106 24 à 72h quadricauda, Scenedesmus obliquus Micractinium 12-48h Pas de données Fermentalg Euglena gracilis, 24-48h 0,1 (DO proche 24 à 48h (donnée erlen) infrarouge, OD- scanner) Chlamydomonas 4-12h Pas de données reinhardtii Fermentalg Nitzschia 72-120h DO 600nm : -6-7 -70h Porphiridium 24-40h Pas de données Fermentalg aeruginum N.B : A cette liste, peuvent être ajoutées une diatomée du genre Stephanodiscus et une chlorophycée du genre Monoraphidium5 REVENDICATIONS1. Dispositif de traitement des eaux usées par culture de microalgues mixotrophes, caractérisé en ce qu'il comprend au moins un bassin de culture des microalgues de type raceway, un fermenteur et au moins un moyen d'alimentation en algue entre ledit fermenteur et ledit raceway de culture des microalgues. 2. Dispositif selon la revendication 1, caractérisé en ce que le fermenteur est de type réacteur agité. 3. Dispositif selon l'une quelconque des revendications 1 ou 2, caractérisé en ce que ledit moyen d'alimentation en algue se fait par soutirage stérile. 4. Dispositif selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisé en ce qu'il comprend en outre un bassin de décantation ou zone de 15 décantation. 5. Dispositif selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisé en ce qu'il comprend en outre un bassin de séparation. 6. Dispositif selon l'une quelconque des revendications 1 à 5, caractérisé en ce qu'il comprend en outre un moyen d'alimentation du bassin de 20 culture des microalgues en gaz carbonique (CO2) contenant de l'air comprimé en CO2 et un diffuseur fines ou moyennes bulles. 7. Dispositif selon l'une quelconque des revendications 1 à 6, caractérisé en ce qu'il comprend en outre au moins un moyen de fixation des microalgues. 25 8. Dispositif selon l'une quelconque des revendications 2 à 7, caractérisé en ce qu'il comprend en outre un moyen de recirculation des eaux entre ledit bassin de culture des microalgues et ledit bassin de décantation ou zone de décantation. 9. Procédé de dépollution des eaux usées par culture de 30 microalgues, comprenant une étape de dépollution des eaux par culture des algues dans un bassin de type Raceway caractérisé en ce que l'on injecte dans 302 3 5 4 8 38 le bassin de culture, régulièrement ou en continu, des souches d'algues prélablement précultivées dans un fermenteur. 10. Procédé selon la revendication 9, caractérisé en ce qu'il met en oeuvre un dispositif tel que décrit dans l'une des revendications 1 à 8. 5 11. Procédé selon la revendication 10, caractérisé en ce que les microalgues sont des microalgues mixotrophes. 12. Procédé selon l'une quelconque des revendications 9 à 11, caractérisé en ce que lesdites microalgues sont des microalgues d'eau douce. 13. Procédé selon l'une quelconque des revendications 9 à 12, 10 caractérisé en ce que les microalgues sont choisies parmi les souches des genres Botryococcus, Chlorella, Scenedesmus, Micractinium, Euglena, Nitzschia, Porphiridium, Chlamydomonas, Stephanodiscus, Monoraphidium. 14. Procédé selon l'une quelconque des revendications 9 à 13, caractérisé en ce qu'il comprend au moins une première étape de dénitrification et de séparation des composants solides des eaux usées à traiter, une deuxième étape de dépollution des eaux issues de la première étape par culture des algues, une troisiéme étape de séparation des eaux traitées issues de la deuxième étape et des algues, caractérisé en ce que l'on injecte dans le milieu de cultures des algues dans le bassin de culture, régulièrement ou en continu, des souches d'algues prélablement précultivées dans un fermenteur. 15. Procédé selon la revendication 14, caractérisé en ce que les algues injectées sont en phase de croissance, avantageusement en début de phase de croissance, très avantageusement à la fin de la phase de latence. 16. Procédé selon la revendication 14, caractérisé en ce que les algues injectées sont à une concentration totale moyenne de 2 à 5 log, avantageusement de 3 à 4 log, de plus que la concentration totale moyenne des souches du milieu de culture contenu dans le bassin de culture utilisé pour le procédé selon l'invention. 17. Procédé selon l'une quelconque des revendications 14 à 16, caractérisé en ce que lesdites algues sont fixées sur des moyens de fixations immergés dans le bassin de culture. 18. Procédé selon l'une quelconque des revendications 14 à 17, caractérisé en ce que la température du milieu de culture est comprise entre 10°C et 30°C, avantageusement entre 20°C et 30°C. 19. Procédé selon l'une quelconque des revendications 14 à 18, caractérisé en ce que le bassin de culture ou raceway est éclairé de manière artificielle soit en continu soit de manière discontinue. 20. Procédé selon l'une des revendications de 14 à 19, caractérisé en ce que les microalgues mixotrophes, et les composés qu'elles contiennent de type amidon, cellulose, pectine, chitine, hémicellulose, soient transformables et fermentescibles en bioéthanol.