Brevet FR3019821A1 — publié le 20151016

NOUVEAUX ANTICORPS UTILES POUR LE DIAGNOSTIC ET LE PRONOSTIC DU CANCER La présente invention concerne le domaine du cancer y compris le diagnostic et le pronostic du cancer ainsi que la sélection de traitement chimio thérapeutique. Plus particulièrement, la présente invention concerne de nouveaux anticorps capables de se lier au domaine central de l'ADN Polymérase Thêta ou Pol e (codée par le gène POLO), les séquences peptidiques correspondantes ainsi que les séquences nucléotidiques codant pour ces anticorps. L'invention concerne l'utilisation de ces anticorps, ainsi que les méthodes correspondantes, pour la détection, le diagnostic et le pronostic de désordres pathologiques hyper prolifératifs associés à l'expression, particulièrement l'expression aberrante, de l'ADN polymérase Thêta. L'invention traite aussi de produits, compositions et/ou kits comprenant au moins un anticorps selon l'invention pour le diagnostic, le pronostic ou la surveillance et le suivi de la thérapie de cancers, en particulier les cancers solides, plus particulièrement encore les cancers du sein, du poumon ou du côlon. Le cancer est une pathologie dans laquelle un groupe de cellules se développent de manière incontrôlée, entraînant une invasion et une destruction des tissus adjacents en créant aussi parfois des métastases via une dispersion dans l'organisme par la lymphe ou le sang. Ces trois paramètres définissant un cancer se différencient de ceux caractérisant une tumeur bénigne, qui n'est pas invasive et ne génère pas de métastases. Il existe de nombreuses méthodes pour le traitement du cancer, que ce soit par chirurgie, radiothérapie, chimiothérapie ou une combinaison de celles-ci. La sélection d'un traitement approprié est essentielle pour le patient. Il est ainsi primordial de savoir à quel moment initier un protocole de traitement lourd et agressif afin de prévenir l'évolution d'un cancer agressif. D'un autre côté, lorsque la tumeur ne le nécessite pas, un traitement lourd et agressif représente forcément un désavantage thérapeutique pour le patient. En effet, de tels traitements induisent diverses toxicités et effets secondaires qui ont un impact significatif sur la qualité de vie du patient et sont en outre la plupart du temps onéreux. Ces traitements ne devraient donc être initiés que lorsqu'ils sont indispensables et/ou utiles. A ce jour, la sélection du traitement des tumeurs solides est basée sur le stade tumoral utilisant le test TNM de l'American Joint Committee on Cancer. Le stade TMN attribut un nombre (I à IV) basé sur la combinaison de trois caractéristiques : T identifie la taille de la tumeur, N le nombre de nodules lymphatiques et M l'existence et la localisation de métastases. Selon les localisations tumorales, la combinaison des trois repères TNM permet d'établir un stade (de I à IV). Plus le stade est élevé plus le cancer est avancé et présage d'une issue défavorable. Bien que reconnu internationalement, cette classification ne permet pas l'identification des cancers dans leurs tous premiers stades de la progression tumorale. En outre, le stade TNM ne donne qu'une information partielle quant à l'agressivité de la tumeur et n'est que d'une utilité limitée pour le pronostic. Différentes protéines et marqueurs génétiques ont été décrits afin d'affiner le pronostic. En particulier l'analyse de l'expression génique a permis l'identification de signatures génétiques. Cependant les informations rassemblées dans diverses études sont souvent confuses (voir e.g. Lenz, Gastrointest Cancer Res, 1(4 Suppl 2): S29-32, 2007; Walther et al., Nat Rev Cancer, 9(7): 489-99, 2009). La robustesse de signatures multigéniques est questionnable car elles concernent les gènes du cycle cellulaire et n'ajoute que peu d'information par rapport au stade TNM. Il existe ainsi un besoin pour de meilleurs tests de pronostic de cancer, non seulement pour améliorer la survie des patients mais aussi leur qualité de vie et afin de réserver les protocoles lourds, agressifs et couteux uniquement lorsque cela est nécessaire et bénéfique pour le patient. Il existe un besoin pour un test monogénique qui peut être utilisé de manière répétable, aisée et fidèle pour le pronostic de divers types de cancers. Lors de la prolifération cellulaire normale, la réplication de l'ADN est assurée par 3 ADN polymérases (Pola, P016 et Pols). Cependant 13 autres ADN polymérases ont été identifiées dans les cellules humaines. Il s'agit de polymérases spécialisées et dont les fonctions sont peu connues. Il semble aussi que ces polymérases sont hautement mutagènes et que leur activité est étroitement contrôlée. L'ADN polymérase Pol thêta (codée par le gène POLO) est une de ces ADN polymérases et contient un domaine hélicase du coté N terminal et un domaine polymérase du côté C terminal. Bien que sa fonction soit peu connue, elle semble être impliquée dans le maintien de la stabilité du génome et dans le réparation de l'ADN (Seki et al., EMBO J, 23: 4484-4494, 2004; Masuda et al., Proc. Nati. Acad. Sci. U.S.A., 102: 13986-13991, 2005, Yoshimura et al., Mol. Ce//, 24 : 115-125, 2006), mais aussi dans l'initiation de la réplication de l'ADN. L'expression de l'ARNm POL Q a été analysée dans diverses tumeurs (Kawamura et al., Int J Cancer, 109: 9-16, 2004; Pillaire et al., Oncogene, 29(6):876-887, 2010; Lemée , Bergoglio et al., Proc Nati Acad Sci U S A., 107(30): 13390-5, 2010; Higgins et al., Oncotarget, 1(3): 175-184, 2010). Kawamura et ses collaborateurs (Kawamura et al., Int J Cancer, 109: 9-16, 2004) ont comparé le niveau d'expression de l'ARNm POLQ dans divers tissus tumoraux et ont trouvé que celui-ci est à peine détectable dans les tissus non tumoraux mais surexprimée dans les tissus tumoraux pulmonaires, stomacaux et du colon. Les auteurs ont aussi indiqué que la surexpression de l'ARNm POL Q est corrélée à un pronostic vital défavorable. Il a été démontré que la dérégulation dans les tumeurs du sein et du poumon de gènes impliqués dans le maintien de la stabilité du génome, dont l'ADN polymérase POL Q, était associée au pronostic vital des patients concernés, indépendamment des marqueurs cliniques conventionnels (Lemée, F., Bergoglio, V. et al. (2010) DNA polymerase e up-regulation is associated with poor survival in breast cancer, perturbs DNA replication, and promotes genetic instability Proc Nati Acad Sci U S A. 107(30): 13390-13395, Allera-Moreau, C., et al. (2012) DNA replication stress response involving PLK1, CDC6, POLQ, RAD51 and CLASPIN upregulation prognoses the outcome of early/mid-stage non-small cell lung cancer patients Oncogenesis. 1(10): e30). Il a aussi été démontré récemment que l'expression de ce biomarqueur, POL Q, perturbe le déroulement normal de la duplication de l'ADN, instaurant un « stress réplicatif » (Lem&ée, F., Bergoglio, V., et al, 2010). Par ailleurs , le stress réplicatif est un évènement précurseur et «moteur» de la cancérogénèse dès ses stades les plus précoces (Pillaire, M. J., et al. (2007) Up-regu!ation of error-prone DNA po!ymerases beta and kappa slows down fork progression without activating the replication checkpoint Cell Cycle 6: 471-7 - Rey, L., et al. (2009) Human DNA polymerase eta is required for common fragile site stability during unperturbed DNA replication Mol Cell Biol 29: 3344-3354 - Bartkova, J., et al. (2005) DNA damage response as a candidate anti-cancer barrier in early human tumorigenesis Nature 434: 864-70 - Gorgoulis, V. G., et al. (2005) Activation of the DNA damage checkpoint and genomic instability in human precancerous lesions. Nature 434: 907-913 - Bartkova, J., et al. (2006) Oncogene-induced senescence is part of the tumorigenesis barrier imposed by DNA damage checkpoints. Nature 444: 633-637). En ce sens, ce biomarqueur anticiperait la prolifération cellulaire (avant de se diviser, la cellule doit dupliquer son génome) et présente donc un avantage original par rapport aux marqueurs conventionnels cliniques ou en développement, qui mesurent tous la prolifération ou la dédifférenciation cellulaire et donc ne mettent en évidence que la conséquence et non la cause. Les cliniciens sont en forte attente d'outils de détection de ces biomarqueurs, capables de prédire à la fois l'agressivité de la tumeur solide néo-diagnostiquée et la réponse aux traitements thérapeutiques conventionnels. A l'heure actuelle il n'existe pas d'outils de détection de biomarqueurs, utilisables en routine dans un environnement clinique. Dans le domaine du cancer du sein il existe deux tests génétiques ; Oncotype® et MammaPrint® . Dans les deux cas il s'agit de marqueurs de la prolifération cellulaire et non de la stabilité du génome. Ils n'apportent donc que peu de valeur ajoutée par rapport à la classification clinicopathologique usuelle (dite TNM). En outre, il s'agit de signatures multi-géniques très difficiles à «populariser» (nécessité d'appareillage de PCR en temps réel multiplex, quantification difficile, pas d'analyse anatomo-pathologique extemporanée possible) et qui concernent donc seulement les structures hospitalières de pointe. En effet, ces techniques de diagnostic et/ou pronostic ne sont pas utilisables ou transférables dans les structures thérapeutiques de tous les hôpitaux ou dans les laboratoires d'anatomo- pathologie, en particulier ceux «de ville». En ce qui concerne les tests de diagnostic basés sur l'utilisation d'anticorps, ceux-ci sont majoritairement basés sur des techniques de western-blot impliquant l'extraction des protéines de l'échantillon, leur séparation par électrophorèse et transfert sur membrane avant révélation de la protéine d'intérêt à l'aide d'anticorps commerciaux. Ces anticorps commerciaux ne sont pas fonctionnels en immunohistochimie sur des coupes de tissus à tester extemporanément. La grande majorité des marqueurs actuels, moléculaires ou cliniques, n'indiquent en réalité que l'état de «prolifération» et de «différenciation» de la tumeur, c'est-à-dire sa capacité à se diviser rapidement. Ils ont, en effet, été généralement découverts suite à des génotypages (puces Affymetrix) qui ont logiquement sélectionnés les évènements génétiques «passengers» - c'est-à-dire les conséquences - et non «drivers» - c'est-à-dire les causes - de la tumeur déjà développée. Aussi, malgré les progrès liés au dépistage et aux techniques chirurgicales, la mortalité associée aux cancers du sein et du poumon reste très élevée ; le cancer du poumon étant le plus meurtrier des cancers chez les hommes et le cancer du sein le plus meurtrier chez les femmes. Les médecins oncologues, même lorsque la tumeur a été détectée de façon précoce, ne possèdent pas actuellement les marqueurs cliniques, et les outils nécessaires à l'établissement d'un pronostic vital fiable et à la prédiction de la réponse chimio-thérapeutique. En l'absence de tels marqueurs, il leur est souvent difficile d'adapter les traitements individualisés adéquats et de moduler la «charge» thérapeutique. Les praticiens appellent ainsi de leurs voeux l'arrivée sur le marché d'outils d'identification et de suivi de marqueurs d'un nouveau type facilement utilisable en routine, qui leur permettraient ainsi soit d'éviter à leurs patients des traitements lourds et mutagènes et/ou d'adapter la chimiothérapie en fonction de la réponse individuelle attendue. C'est ainsi là un but de la présente invention que de fournir un outil de détection de biomarqueur d'un nouveau type, facile et rapide à mettre en oeuvre. La présente invention a ainsi pour objectif de fournir au moins un produit qui peut être utilisé en tant qu'outil de diagnostic et/ou pronostic ou de surveillance des désordres pathologiques hyperprolifératifs, par exemple le cancer, particulièrement ceux caractérisés par une expression de l'ADN polymérase Pol Thêta ou provoqués par une expression aberrante de l'ADN polymérase Pol Thêta. Plus particulièrement l'invention a pour but de fournir des outils utilisables en routine et particulièrement en immunohistochimie sur des prélèvements de tissus de patient sain, de patient susceptible d'être atteint d'un cancer ou de patient atteint de cancer. Ainsi la présente invention fournit au moins un anticorps, particulièrement au moins un anticorps monoclonal, capable de se lier au domaine central de l'ADN polymérase Pol Thêta. Les anticorps selon l'invention présentent la capacité à pouvoir être utilisés à des fins de diagnostic et/ou de pronostic. Dans une forme préférée, le au moins anticorps selon la présente invention, particulièrement monoclonal, est capable de se lier au domaine central de l'ADN polymérase Pol Thêta et permet la détection de cette l'ADN polymérase en immunohistochimie ou immunofluorescence, préférentiellement immunohistochimie. De manière surprenante et a contrario des anticorps du commerce, les anticorps selon la présente invention ont la propriété remarquable de pouvoir se lier au domaine central de l'ADN polymérase Pol Thêta sous sa forme entière en western blot et non seulement une forme tronquée ou une fraction de celle-ci. La capacité de liaison des anticorps selon la présente invention se manifeste en particulier sur des cellules ou des coupes histologiques de tissus obtenus à partir d'un patient. Cette capacité de liaison peut ainsi être révélée et évaluée par des techniques d'immunohistochimie ou d'immunofluorescence. Dans une forme de réalisation, les anticorps selon l'invention sont des anticorps monoclonaux. Dans un de ses aspects, l'invention concerne des anticorps isolés, un dérivé ou fragment fonctionnel de ceux-ci ayant la capacité de liaison antigénique, et qui se lient au domaine central de l'ADN polymérase Pol Thêta. Ainsi l'invention concerne au moins un anticorps selon l'invention pour son utilisation pour le diagnostic in vitro ou ex vivo d'un désordre associé à l'expression de l'ADN polymérase Pol Thêta. Dans un mode de réalisation de la présente invention, le désordre associé à l'expression de l'ADN polymérase Pol Thêta est le cancer. Dans un mode de réalisation particulier de la présente invention, les anticorps monoclonaux selon l'invention, capables de se lier au domaine central de l'ADN polymérase Pol Thêta, permettent la détection de l'ADN polymérase Pol Thêta en immunohistochimie ou immunofluorescence, préférentiellement en immunohistochimie. Dans un autre mode de réalisation particulier de la présente invention, les anticorps monoclonaux selon l'invention, capables de se lier au domaine central de l'ADN polymérase Pol Thêta, permettent la détection de l'ADN polymérase Pol Thêta en western blot. Dans un mode de réalisation particulier de la présente invention, les anticorps monoclonaux selon l'invention, capables de se lier au domaine central de l'ADN polymérase Pol Thêta, permettent la détection de l'ADN polymérase Pol Thêta en immunoprécipitation. La présente invention concerne aussi des anticorps, leurs dérivés ou fragments fonctionnels, obtenus par recombinaison génétique ou synthèse chimique. Dans un mode de réalisation particulier, les anticorps selon la présente invention sont des anticorps monoclonaux. Un anticorps monoclonal correspond à une population d'anticorps identiques dirigés contre le même épitope d'un antigène. Ces anticorps sont produits en culture par un clone de lymphocytes B selon la technique des hybridomes ou via une cellule hôte transfectée par des acides nucléiques codant pour l'anticorps en question. Après avoir immunisé une souris, par exemple, contre un antigène donné, on prélève dans sa rate des lymphocytes B. Ceux-ci sont fusionnés avec des plasmocytes tumoraux immortalisés. Après sélection, les hybridomes ainsi obtenus sont une source permanente et stable d'un seul type d'anticorps monoclonal. La spécificité des anticorps monoclonaux est supérieure à celle des sérums polyclonaux. Un anticorps monoclonal est généralement caractérisé par des chaînes lourdes d'une et seulement une classe et sous-classe et des chaînes légères d'un seul type. Les antigènes utilisés pour obtenir les anticorps selon l'invention comprennent des séquences d'amino-acides ou peptidiques du domaine central de la protéine ADN polymérase Pol Thêta. Ils sont avantageusement choisis au sein de sous-domaines tridimensionnels de la protéine présentant des critères d'exposition externe et donc d'accessibilité, mais aussi selon un équilibre hybrophobicité/hydrophilicité desdits sous-domaines du domaine central, selon l'encombrement stérique et la polarité des différents groupes mais aussi selon les interactions électrostatiques et hydrogène. Cette évaluation peut être réalisée via une modélisation de la structure tridimensionnelle et du repliement de la protéine grâce à des outils prédictifs logiciels connus de l'homme du métier à partir de la séquence peptidique de la protéine. Ainsi les séquences d'amino acides ou peptidiques correspondant à celles indiquées dans le Tableau 1 ont été déterminées et les peptides correspondants utilisés pour réaliser l'immunisation de souris aux fins de production des anticorps selon l'invention. Ces séquences peptidiques correspondent aux épitopes antigéniques reconnus par les anticorps selon la présente invention et sont situés au début ou à la fin du domaine central de la protéine ADN Polymérase Pol Thêta. Tableau 1 : Peptides utilisés pour immunisation et séquences amino-acide correpondants reconnus par les anticorps selon l'invention Peptides Séquences amino-acides SEQ ID N° Peptide 1 CKHSPNIVQDLNKSREHTSS 1 Peptide 2 CSIFRARKRASLDINKEKPG 2 Peptide 3 CLQEDLIKKSNVNENQDTH 3 Peptide 4 HDETSSLLPRKESNIVDDNGC 4 Les anticorps obtenus sont les anticorps 1B1, 18E1, 10B2 et 15G9 qui reconnaissent, respectivement, les séquences d'amino-acides ou peptidiques 2, 4, 1, et 4. Dans une certaine mesure, l'anticorps 10B2 reconnait aussi la séquence d'amino- acides 2 mais plus faiblement. Une immunoglobuline de type G (IgG) appartient à une classe de molécules anticorps. Un anticorps IgG est typiquement constitué de deux chaînes lourdes identiques et de deux chaînes légères identiques. Chaque chaîne lourde et légère comprend un domaine constant et un domaine variable. Les 2 chaînes lourdes (H pour heavy) et les 2 chaînes légères (L pour light) qui sont reliées entre elles par un nombre variable de ponts disulfures assurant une flexibilité de la molécule. Ces chaînes forment une structure en Y (chaque chaîne légère constitue pour moitié un bras du Y). Chaque chaîne légère est constituée d'un domaine constant et d'un domaine variable; les chaînes lourdes sont composées d'un fragment variable et de 3 ou 4 fragments constants. Pour un anticorps donné, les deux chaînes lourdes sont identiques, de même pour les deux chaînes légères. Chaque domaine variable contient 3 segments dénommés Région Déterminant la Complémentarité ou CRD ou encore région hyper-variable. On désignera dans la présente description CDR ou CDRs lorsqu'on se réfère à un seul CDR ou à plus d'un CDR, respectivement. Les CDRs sont responsables de la liaison spécifique à l'épitope de l'antigène. Il existe 3 CDRs au niveau de chaque chaîne lourde et de chaque chaîne légère. Ils sont classiquement identifiés CDR1, CDR2 et CDR3, numérotés séquentiellement à partir de l'extrémité N terminale. Les portions plus conservées des domaines variables sont appelées « framework regions ». Selon la présente invention, les CDRs des anticorps sont définis selon la nomenclature IMGT (Système d'information international en immunogénétique). Le système de numérotation IMGT a été défini pour comparer les domaines variables indépendamment de l'espèce. Selon le système IMGT, les acides aminés conservés ont toujours la même position, par exemple la cystéine 23, le tryptophane 41, un acide aminé hydrophobe 89, la cystéine 104, la phénylalanine ou le tryptophane 118. Le système de numérotation IMGT fournit une délimitation standardisée des régions framework et des CDRs. Ainsi le CDR1 correspond à la fraction des résidus 27 à 38, le CDR2 des résidus 56 à 65 et le CDR3 des résidus 105 à 117 (Lefranc et al ; Nucl. Acids Res. (1999) 27 (1): 209-212). Dans un mode de réalisation, l'anticorps monoclonal selon l'invention capable de lier au domaine central de l'ADN polymérase Pol Thêta est sélectionné dans le groupe comprenant les anticorps suivants : a. anticorps capable de se lier à la séquence amino acide ayant la SEQ 1 du domaine central de l'ADN polymérase Pol Thêta, b. anticorps capable de se lier à la séquence amino acide ayant la SEQ 2 du domaine central de l'ADN polymérase Pol Thêta , c. anticorps capable de se lier à la séquence amino acide ayant la SEQ 4 du domaine central de l'ADN polymérase Pol Thêta . Dans un mode de réalisation, l'anticorps monoclonal selon l'invention capable de lier au domaine central de l'ADN polymérase Pol Thêta est sélectionné dans le groupe comprenant les anticorps suivants : a. anticorps capable de se lier à la séquence amino acide ayant la SEQ 1 du domaine central de l'ADN polymérase Pol Thêta caractérisé en ce que ledit anticorps comprend les 6 CDRs comprenant les séquences amino acide respectives suivantes : SEQ ID 21, SEQ ID 22, SEQ ID 23, SEQ ID 24, SEQ ID 25, SEQ ID 26. b. anticorps capable de se lier à la séquence amino acide ayant la SEQ 2 du domaine central de l'ADN polymérase Pol Thêta caractérisé en ce que ledit anticorps comprend les 6 CDRs comprenant les séquences amino acide respectives suivantes : SEQ ID 5, SEQ ID 6, SEQ ID 7, SEQ ID 8, SEQ ID 9, SEQ ID 10. c. anticorps capable de se lier à la séquence amino acide ayant la SEQ 4 du domaine central de l'ADN polymérase Pol Thêta caractérisé en ce que ledit anticorps comprend les 6 CDRs comprenant les séquences amino acide respectives suivantes : SEQ ID 13, SEQ ID 14, SEQ ID 15, SEQ ID 16, SEQ ID 17, SEQ ID 18. d. anticorps capable de se lier à la séquence amino acide ayant la SEQ 4 du domaine central de l'ADN polymérase Pol Thêta caractérisé en ce que ledit anticorps comprend les 6 CDRs comprenant les séquences amino acide respectives suivantes : SEQ ID 29, SEQ ID 30, SEQ ID 31, SEQ ID 32, SEQ ID33, SEQ ID 34. De manière préférentielle, l'anticorps capable de se lier à la séquence d'amino acides ayant la SEQ 1 du domaine central de l'ADN polymérase Pol Thêta comprend : i. Une chaîne lourde comprenant les 3 CDRs : CDR3H1, CDR3H2 et CDR3H3 ayant les séquences respectives suivantes SEQ ID 21, SEQ ID 22 et SEQ ID 23, ii. Une chaîne légère comprenant les 3 CDRs : CDR3L1, CDR3L2 et CDR3L3 ayant les séquences respectives suivantes SEQ ID 24, SEQ ID 25 et SEQ ID 26. De manière aussi préférée, l'anticorps capable de se lier à la séquence d'amino acides ayant la SEQ 2 du domaine central l'ADN polymérase Pol Thêta comprend : i. Une chaîne lourde comprenant les 3 CDRs : CDR1H1, CDR1H2 et CDR1H3 ayant les séquences respectives suivantes SEQ ID 5, SEQ ID 6 et SEQ ID 7, ii. Une chaîne légère comprenant les 3 CDRs : CDR1L1, CDR1L2 et CDR1L3 ayant les séquences respectives suivantes SEQ ID 8., SEQ ID 9 et SEQ ID 10. De manière encore plus préférée, l'anticorps capable de se lier à la séquence d'amino 5 acides ayant la SEQ 4 du domaine central l'ADN polymérase POL Q comprend : i. une chaîne lourde comprenant les 3 CDRs : CDR2H1, CDR2H2 et CDR2H3 ayant les séquences respectives suivantes SEQ ID 13, SEQ ID 14 et SEQ ID 15, ii. une chaîne légère comprenant les 3 CDRs : CDR2L1, CDR2L2 et CDR2L3 10 ayant les séquences respectives suivantes SEQ ID 16, SEQ ID 17 et SEQ ID 18. De manière préférée, l'anticorps capable de se lier à la séquence d'amino acides ayant la SEQ 4 du domaine central l'ADN polymérase Pol Thêta comprend : 15 i. une chaîne lourde comprenant les 3 CDRs : CDR4H1, CDR4H2 et CDR4H3 ayant les séquences respectives suivantes SEQ ID 29, SEQ ID 30 et SEQ ID 31 ii. une chaîne légère comprenant les 3 CDRs : CDR4L1, CDR4L2 et CDR4L3 ayant les séquences respectives suivantes SEQ ID 32, SEQ ID 33 et SEQ 20 ID 34. Dans une variante encore préférée, l'anticorps selon la présente invention est choisi parmi : a. L'anticorps capable de se lier à la fraction peptidique ayant la SEQ 1 du domaine central de l'ADN polymérase Pol Thêta comprenant : 25 i. une chaîne lourde comprenant les 3 CDRs : CDR3H1, CDR3H2 et CDR3H3 ayant les séquences respectives suivantes SEQ ID 21, SEQ ID 22 et SEQ ID 23, ii. un domaine variable de chaîne légère comprenant la SEQ ID 28, b. L'anticorps capable de se lier à la fraction peptidique ayant la SEQ 2 du domaine 30 central l'ADN polymérase Pol Thêta comprend : i. une chaîne lourde comprenant les 3 CDRs : CDR1H1, CDR1H2 et CDR1H3 ayant les séquences respectives suivantes SEQ ID 5, SEQ ID 6 et SEQ ID 7, ii. un domaine variable de chaîne légère comprenant la SEQ ID 12, c. L'anticorps capable de se lier à la fraction peptidique ayant la SEQ 4 du domaine central l'ADN polymérase POL Q comprenant : i. une chaîne lourde comprenant les 3 CDRs : CDR2H1, CDR2H2 et CDR2H3 ayant les séquences respectives suivantes SEQ ID 13, SEQ ID 14 et SEQ ID 15, ii. un domaine variable de chaîne légère comprenant la SEQ ID 20, d. L'anticorps capable de se lier à la fraction peptidique ayant la SEQ 4 du domaine central l'ADN polymérase Pol Thêta comprenant : i. une chaîne lourde comprenant les 3 CDRs : CDR4H1, CDR4H2 et CDR4H3 ayant les séquences respectives suivantes SEQ ID 29 SEQ ID 30 et SEQ ID 31, ii. un domaine variable de chaîne légère comprenant la SEQ ID 36. Dans un mode de réalisation particulièrement préféré, l'anticorps selon l'invention est choisi parmi : a. l'anticorps capable de se lier à la fraction peptidique ayant la SEQ 1 du domaine central de l'ADN polymérase Pol Thêta comprend : i. une chaîne légère comprenant les 3 CDRs : CDR3L1, CDR3L2 et CDR3L3 ayant les séquences respectives suivantes SEQ ID 24, SEQ ID 25 et SEQ ID 26, ii. un domaine variable de chaîne lourde comprenant la SEQ ID 27, b. l'anticorps capable de se lier à la fraction peptidique ayant la SEQ 2 du domaine central l'ADN polymérase Pol Thêta comprend : i. une chaîne légère comprenant les 3 CDRs : CDR1L1, CDR1L2 et CDR1L3 ayant les séquences respectives suivantes SEQ ID 8, SEQ ID 9 et SEQ ID 10, ii. un domaine variable de chaîne lourde comprenant la SEQ ID 11, c. l'anticorps capable de se lier à la fraction peptidique ayant la SEQ 4 du domaine central l'ADN polymérase POL Théta comprend : i. une chaîne légère comprenant les 3 CDRs : CDR2L1, CDR2L2 et CDR2L3 ayant les séquences respectives suivantes SEQ ID 16, SEQ ID 17 et SEQ ID 18, ii. un domaine variable de chaîne lourde comprenant la SEQ ID 19, d. l'anticorps capable de se lier à la fraction peptidique ayant la SEQ 4 du domaine central l'ADN polymérase Pol Thêta comprend : i. une chaîne légère comprenant les 3 CDRs : CDR4L1, CDR4L2 et CDR4L3 ayant les séquences respectives suivantes SEQ ID 32, SEQ ID 33. et SEQ ID 34, ii. un domaine variable de chaîne lourde comprenant la SEQ ID 35. Dans un mode de réalisation encore plus préféré, l'anticorps selon l'invention est choisi parmi : a. l'anticorps capable de se lier à la fraction peptidique ayant la SEQ 1 du domaine central de l'ADN polymérase Pol Thêta comprend : i. un domaine variable de la chaîne lourde comprenant la SEQ ID 27, ii. un domaine variable de chaîne légère comprenant la SEQ ID 28, b. l'anticorps capable de se lier à la fraction peptidique ayant la SEQ 2 du domaine central l'ADN polymérase Pol Thêta comprend : i. un domaine variable de la chaîne lourde comprenant la SEQ ID 11, ii. un domaine variable de la chaîne légère comprenant la SEQ ID 12, c. l'anticorps capable de se lier à la fraction peptidique ayant la SEQ 4 du domaine central l'ADN polymérase Pol Thêta comprend : iii. un domaine variable de la chaîne lourde comprenant la SEQ ID 19, iv. un domaine variable de la chaîne légère comprenant la SEQ I D20, d. l'anticorps capable de se lier à la fraction peptidique ayant la SEQ 4 du domaine central l'ADN polymérase Pol Thêta comprend : i. un domaine variable de la chaîne lourde comprenant la SEQ ID 35, ii. un domaine variable de la chaîne légère comprenant la SEQ ID 36. Dans une forme préférée de l'invention, l'anticorps est l'anticorps 1B1 comprenant : i. une chaîne lourde comprenant la séquence SEQ ID 39, ii. une chaîne légère comprenant la séquence SEQ ID 40. Dans une forme préférée de l'invention, l'anticorps est l'anticorps 18E1 comprenant : i. une chaîne lourde comprenant SEQ I D41, ii. une chaîne légère comprenant SEQ ID 42. Dans une forme préférée de l'invention, l'anticorps est l'anticorps 10B2 comprenant : i. une chaîne lourde comprenant SEQ ID 37, ii. une chaîne légère comprenant SEQ ID 38. Dans une forme préférée de l'invention, l'anticorps est l'anticorps 15G9 comprenant : i. une chaîne lourde comprenant SEQ ID 43, ii. une chaîne légère comprenant SEQ ID 44. Les anticorps selon la présente invention présentent la propriété remarquable de pouvoir se lier au domaine central de l'ADN polymérase Pol Thêta , sous forme entière non tronquée, ou bien d'isoformes de la protéine, en particulier dans son environnement tissulaire endogène, plus particulièrement encore au sein de coupes histologique de tissus issus de prélèvement sur un sujet (pièce opératoire ou biopsie) chez lequel on souhaite diagnostiquer un cancer, pronostiquer l'évolution d'un cancer et/ou orienter le traitement par chimiothérapie. Cette propriété de liaison au domaine central de l'ADN Polymérase Pol Thêta peut être observée en western blot, immunohistochimie, en immunofluorescence ainsi qu'en immunoprécipitation, particulièrement en immunohistochimie. En histologie humaine, le prélèvement de tissus que l'on souhaite évaluer peut se faire sur pièces opératoires ou par biopsie. La fixation de ces prélèvements a pour but de conserver les structures. En effet, le prélèvement des tissus provoque leur mort : ce qui peut entraîner autodigestion du tissu ou putréfaction des tissus par contamination. L'intérêt de la fixation réside dans l'immobilisation des constituants tissulaires/cellulaires, prévient l'autolyse cellulaire, la putréfaction bactérienne post-mortem et permet les techniques histologiques ainsi que les colorations ultérieures. Les techniques de fixation ne sont pas critiques et sont bien connues de l'homme du métier. Par exemple, un fixateur bien connu en microscopie optique est le formol. Durée et quantité de fixateur dépendent de la quantité de tissus à fixer. Ces paramètres ne sont pas critiques dans le cadre de la présente invention et sont bien connus de l'homme du métier. Pour que la lumière puisse passer à travers le tissu à examiner, celui-ci doit être très fin et solide. Cela peut être obtenu via les techniques d'inclusion. L'inclusion en paraffine consiste à infiltrer et à enrober les tissus à examiner avec de la paraffine. L'inclusion est précédée de deux étapes. Il faut tout d'abord procéder à la déshydratation par passage des tissus dans des bains d'alcool de degré croissant (70°, 80°, 90°, 95°, 99°, 100°). L'intérêt de la déshydratation est d'éliminer le fixateur. L'alcool (éthanol) est ensuite remplacé par un solvant miscible à la paraffine. Il peut s'agir soit de xylène, soit de toluène par exemple. Ces substances éliminent l'éthanol. Au fur et à mesure de leur infiltration par le solvant, les tissus ont tendance à s'éclaircir. Une fois totalement imprégné, le tissu est placé dans de la paraffine fondue (portée à 56/58°C) ; la chaleur provoque l'évaporation du solvant (et sa dissolution dans la paraffine) : les espaces ainsi libérés sont remplis par la paraffine. Les tissus enrobés de paraffine sont placés dans de petits moules, à température ambiante, ce qui provoque le durcissement de la paraffine et donc la rigidification des fragments tissulaires prélevés. On procède alors au démoulage : on obtient des fragments tissulaires inclus dans un bloc de paraffine. Pour isoler des coupes à partir du bloc de paraffine, on utilise pour cela un microtome, qui fait avancer le bloc sur un rasoir : le bloc avance d'environ 2 à 3 pm à chaque fois. L'ensemble des tranches vont former un ruban dans lequel on retrouve des coupes sériées de prélèvement tissulaire. Les coupes sont ensuite collées par chauffage sur des lames de verre. Les tissus de l'organisme ne sont pas spontanément colorés, ce qui rend les observations difficiles. Cependant, pour que l'on puisse utiliser une coloration, la paraffine doit être éliminée. On procède donc au déparaffinage, qui consiste à passer les lames dans des bains de toluène ou de xylène afin de dissoudre la paraffine. On effectue ensuite une réhydratation : l'alcool se mélange avec l'eau et le toluène, on passe les lames dans des bains d'alcool de degré décroissant. L'utilisation de tissus congelés ou de tissus fixés et inclus en paraffine est envisagée dans le cadre de la présente invention. Dans le cadre de tissus congelés, il conviendra de pratiquer des coupes au cryostat ; dans ce cas, la morphologie sera moins bien conservée que sur des coupes fixées et incluses dans la paraffine. Un intérêt est de pouvoir préserver des épitopes qui pourraient avoir été détruits par des procédés de fixation et d'inclusion. Néanmoins, l'utilisation de l'immunohistochimie sur coupes congelées tend à diminuer, d'une part en raison de la fabrication d'anticorps reconnaissant des épitopes résistants à la fixation, d'autre part en raison de l'encombrement et de la logistique nécessaires à cette méthode de conservation. De manière avantageuse mais non obligatoire, des tissus fixés inclus en paraffine seront utilisés dans le cadre de la présente invention. Les avantages sont l'utilisation a posteriori quand le tissu a été fixé et la possibilité d'études rétrospectives (sur blocs ou sur lames) ainsi qu'une morphologie bien conservée. Les techniques d'immunomarquage sont assimilées à des techniques de coloration ; on peut utiliser des anticorps couplés à des substances que l'on peut révéler en microscopie (enzymes, substances fluorescentes, ... ). L'immunohistochimie (ou « IHC ») est le nom d'une méthode de localisation de protéines dans les cellules au sein d'une coupe de tissu au moyen d'anticorps capables de révéler lesdites protéines. L'immunohistochimie exploite la capacité d'un anticorps à se lier spécifiquement à un antigène dans les tissus biologiques. Les anticorps peuvent être d'origine polyclonale ou monoclonale. L'immunohistochimie (ou immunocytochimie) consiste à détecter dans les tissus ou les cellules, le site de la liaison d'un anticorps spécifique avec la protéine contre laquelle il est dirigé. En immunohistochimie, on utilise la spécificité de l'interaction anticorps- antigène pour identifier de manière sélective des protéines spécifiques se trouvant dans des cellules ou des sections de tissu. Cette technique peut être utilisée sur des cellules fracturées ou sur des sections de tissus congelées ou fixées. L'intérêt de cette technique est de repérer des antigènes (protéines le plus souvent) d'intérêt au niveau cellulaire ou extracellulaire à l'aide d'anticorps spécifiques. La principale difficulté de l'IHC est de disposer d'un bon anticorps spécifique et pouvant atteindre son épitope sur la coupe. Or, c'est une propriété des anticorps selon la présente invention que de pouvoir atteindre et se lier au domaine central de l'ADN Polymérase Pol Thêta au sein de coupes de tissus et être révélés en immunohistochimie. La visualisation de l'interaction entre un anticorps selon l'invention et le domaine central de l'ADN Polymérase Pol Thêta peut se réaliser par divers moyens. Dans les cas les plus courants, l'anticorps secondaire reconnaissant l'anticorps primaire de l'invention est conjugué à une enzyme, par exemple la peroxydase qui a la capacité de catalyser une réaction colorée. Alternativement, l'interaction peut être détectée par immunofluorescence. "Immunofluorescence", telle qu'utilisée dans la présente demande se réfère à une réaction antigène-anticorps dans laquelle l'anticorps secondaire est marqué avec une molécule fluorescente (fluorochrome) et le complexe antigène-anticorps formé est visualisé à l'aide d'un microscope à fluorescence. Dans le cadre de la présente invention, l'immunofluorescence comprend l'immunofluorescence directe et l'immunofluorescence indirecte. Dans le cas d'immunofluorescence directe, un anticorps marqué directement par un fluorophore est mis en oeuvre pour détecter l'ADN polymérase Pol Thêta. En immunofluorescence indirecte, un anticorps primaire spécifique de l'ADN polymérase Pol Thêta est reconnu par un anticorps secondaire lié à un fluorochrome. Les fluorochromes sont des composés qui absorbent à une certaine longueur d'onde et émettent à une autre longueur d'onde visible par fluorescence. Des fluorochromes communs sont la rhodamine, la lissamine par exemple. Lorsque de la fluorescéine (FITC) est excitée par une lumière bleue (longueur d'onde 488nm), elle émet une lumière verte (520nm). La phycoérythrine (PE) émet une lumière orange (570nm). Les fluorochromes couramment utilisés en immunofluorescence sont l'isothiocyanate de fluorescéine (vert) et l'isothiocyanate de tetraméthyl rhodamine (rouge) par exemple. L'immunofluorescence directe sur coupe en congélation est une méthode très spécifique qui évite toutes les réactions non spécifiques. C'est une méthode qui nécessite d'utiliser des anticorps couplés à un chromogène fluorescent (Fluorescéine, Rhodamine, Rouge Texas...). C'est ainsi un objet de la présente invention que de fournir des anticorps tels que décrits plus avant qui sont marqués eux-mêmes ou bien l'anticorps secondaire qui les reconnait, particulièrement par couplage avec un chromogène fluorescent. Dans la coloration immunohistochimique directe, un anticorps étiqueté se lie directement à son antigène. Bien qu'elle n'utilise qu'un seul anticorps et qu'elle soit simple et rapide à mettre en oeuvre, la coloration immunohistochimique peut souffrir d'un certain manque de sensibilité. Pour la révélation de l'immunohistochimie indirecte, les enzymes utilisées peuvent être la peroxydase ou la phosphatase alcaline par exemple et les chromogènes sont le plus souvent la diaminobenzidine (réaction de couleur brune) ou l'aminoéthylcarbazole (3-amino, 9-éthyl carbazole, AEC, réaction de couleur rouge). L'intensité du signal obtenu après marquage d'une réaction antigène-anticorps dépend du nombre de molécules colorées visibles. Il est fréquent d'utiliser des méthodes indirectes, où un anticorps secondaire marqué reconnait l'anticorps primaire lié à l'antigène. Plusieurs anticorps secondaires peuvent être en mesure de lier différents sites antigéniques sur l'anticorps primaire, amplifiant ainsi le signal à détecter. La réaction anticorps-antigène peut être visualisée en utilisant un agent réactif tertiaire tel qu'une enzyme rapporteur (comme la peroxydase qui catalyse une réaction de formation de couleur), un métal colloïdal, une étiquette radio ou un fluorophore (comme le rouge Texas ou le FITC). Dans le cas d'un système à enzyme rapporteur, l'ajout d'un substrat adéquat (chromogène) tel que I'AEC ou la DAB a pour résultat la production d'un produit coloré qui colore la cellule avec la peroxydase comme enzyme rapporteur. Plusieurs mécanismes d'amplification sont possibles, parmi lesquelles les méthodes à trois couches, d'autant que l'anticorps intermédiaire divalent peut aussi servir à attacher un complexe réactif : peroxydase-antiperoxydase, avidine-biotine peroxydase (ou phosphatase alcaline) et streptavidine-biotine-peroxydase par exemple. On peut multiplier le nombre de molécules réactives en les attachant à un polymère ou bien l'amplification peut être générée par la création d'un complexe qui multiplie les molécules d'enzyme attachées de façon non covalente à l'anticorps (tyramide). L'amplification peut être apportée par l'augmentation du temps d'incubation et aussi par le prétraitement des coupes déparaffinées par la chaleur ou des enzymes. A titre d'exemple non limitatif d'amplification, on peut citer la méthode immunoenzymatique de type streptavidine-biotine-peroxydase : l'anticorps primaire se fixe à l'antigène, ensuite l'anticorps secondaire se fixe à l'anticorps primaire et porte une molécule de biotine qui fixe un complexe streptavidine-peroxydase. Une autre méthode immunoenzymatique avec amplification du signal par un polymère existe : l'anticorps primaire se fixe à l'antigène, l'anticorps secondaire se fixe à l'anticorps primaire et est couplé à un polymère inerte qui porte plusieurs molécules d'anticorps secondaires et de peroxydase. Ces exemples ne sont bien sûr pas limitatifs et de nombreuses techniques ou réactifs commerciaux sont disponibles pour révéler des anticorps. Dans un mode de réalisation, la présente invention concerne un ou plusieurs anticorps monoclonaux murins. La présente invention concerne aussi des dérivés ou fragments fonctionnels des anticorps selon l'invention, ayant les mêmes propriétés de liaison antigénique que les anticorps selon la présente invention. Par l'expression « dérivés ou fragments fonctionnels ayant des propriétés de liaison antigénique », on entend en particulier des structures protéiques ayant une capacité de liaison spécifique ou identique aux anticorps selon l'invention et comprenant au moins un, au moins 2, au moins 3, au moins 4, au moins 5, particulièrement 6 des CDRs d'un anticorps selon la présente invention, de manière à préserver la capacité de liaison au domaine central l'ADN polymérase Pol Thêta ou aux épitopes. Par l'expression fragment, on entend une partie de l'anticorps et par l'expression dérivés on entend toute structure comprenant l'anticorps sur lequel est greffé un autre anticorps ou une autre chaîne peptidique par exemple de type échafaudage. En particulier, les composés dérivés selon la présente invention peuvent consister en des échafaudages protéiques de type immunoglobuline par exemple. L'homme du métier connait diverses techniques de construction d'échafaudage peptidique ainsi que les moyens de greffage de CDRs des anticorps selon la présente invention afin de préserver les propriétés de reconnaissance et de liaison aux épitopes du domaine central de l'ADN polymérase Pol Thêta tels que décrits dans la présente invention. Un autre aspect de la présente invention concerne des fragments fonctionnels des anticorps selon la présente invention. Les fragments fonctionnels des anticorps selon la présente invention peuvent ainsi être des fragments Fv, Fab, (Fab')2, Fab', scFv, scFv-Fc ou des ditanticorps ou tout fragment dont la demi-vie a été accrue tels que des fragments modifiés par addition de PEG. Par soucis de clarté, le Tableau 2 résume les séquences correspondant aux anticorps selon l'invention. Tableau 2 : Séquences SEQ ID N° des séquences protéiques des composantes des anticorps selon l'invention Anticorps Chaine lourde Chaine légère Séquence protéique SEQ ID 1B1 CDR1H1 GYTFTNYW 5 CDR1H2 IDPSDRYT 6 CDR1H3 TMYSFAY 7 CDR1L1 QSLLDSDGKTY 8 CDR1L2 L V S 9 CDR1L3 VQGA H LPQT 10 Domaine QVQLQQPGADLVKPGAS variable chaine lourde VKLSCKTSGYTFTNYWI QVVIKQKPGQGLEVVIGEI DPSDRYTNYNQRFKGKA 11 TLTVDTSSSTAYMQLNS LTSEDSAVYYCTMYSFA YWGQGTLVTVSA Domaine variable chaine légère DVVMTQTPLTLSVTIGQ PASISCKSSQSLLDSDG KTYLNWLLQSPGQSPKL LIYLVSKLESGVPDRFSG SGSGTDFTLKISRVEAE DLGVYYCVQGAHLPQTF GSGTKLEI KR 12 18E1 CDR2H1 GDTFTDYP 13 CDR2H2 INAETAEP 14 CDR2H3 ASSYGY 15 CDR2L1 QSLL YS D G KTY 16 CDR2L2 L V S 17 CDR2L3 VQGSHFPHT 18 Domaine variable chaine QIQLVQSGPELKKPGET VKISCKASGDTFTDYPM HVVVKQAPGKGLKVVMGVV lourde INAETAEPTYVDDFKGR 19 FAFSLESSASTAYLQINN LKNEDTATYFCASSYGY WGQGTLVTVSA Domaine DIVMTQTPLTLSVTIGQP variable chaine légère ASISCKSSQSLLYSDGK 20 TYLNWLFQSPGQSPKLL IYLVSKLESGVPDRFSG SGSGTDFTLKISRVEAE DLGVYYCVQGSHFPHTF GSGTKLEINR 10B2 CDR3H1 GYTFTDYY 21 CDR3H2 I N P N N G G S 22 CDR3H3 ARGDYSGTSFVMFAH 23 CDR3L1 KSLLHSNGNTY 24 CDR3L2 Y M S 25 CDR3L3 MQSLEYPVT 26 EVQLQQSGPELVKPGAS Domaine VKISCKASGYTFTDYYM variable chaine lourde NWVKQSHGKTLEWIGDI NPNNGGSHYNQKFRGK ATLTIDKSSSTAYMDLRS 27 LTSEDSAVYYCARGDYS GTSFVMFAHVVGQGTLVT VSA DIVMTQAAPSVPVTPGE Domaine SVSISCRSTKSLLHSNG variable chaine légère NTYLYWFLQRPGQSPQL LIYYMSNPASGVPDRFS GSGSGTDFTLRISRVGA 28 EDVGIYYCMQSLEYPVT FGAGTKLELKR 15G9 CDR4H1 GYTFTDYA 29 CDR4H2 IRTYSGDA 30 CDR4H3 ATGFNY 31 CDR4L1 QSLLHSNGKTY 32 CDR4L2 L V S 33 CDR4L3 LQATHFPHT 34 QVQLQQSGAELVRPGVS Domaine variable chaine lourde VKISCKGSGYTFTDYAM HWVKQSHAKSLEWIGVI RTYSGDATYNQKFKGKA TMTVDKSSSTAYM ELAR 35 LTSEDSAIYYCATGFNY WGQGTTLTVSS DVVMTQTPLTLSVTIGQ Domaine variable chaine PASISCKSSQSLLHSNG KTYLNWLLQRPGQSPKL LIYLVSKLESGVPDRFSG 36 légère SGSGTDFTLKISRVEAE DLGLYYCLQATHFPHTF GSGTKLEI KR Anticorps Séquence protéique SEQ ID 10B2 Chaîne lourde EVQLQQSGPELVKPGASVKISCKA SGYTFTDYYMNVVVKQSHGKTLEVV IGDINPNNGGSHYNQKFRGKATLTI DKSSSTAYMDLRSLTSEDSAVYYC ARGDYSGTSFVMFAHWGQGTLVT VSAAKTTPPSVYPLAPGSAAQTNS MVTLGCLVKGYFPEPVTVTWNSGS LSSGVHTFPAVLQSDLYTLSSSVT VPSSTVVPSQTVTCNVAHPASSTKV DKKIVPRDCGCKPCICTVPEVSSV FIFPPKPKDVLTITLTPKVTCVVVDI SKDDPEVQFSVVFVDDVEVHTAQT KPREEQINSTFRSVSELPIMHQDVV LNGKEFKCRVNSAAFPAPIEKTISK TKGRPKAPQVYTIPPPKEQMAKDK VSLTCMITNFFPEDITVEVVQVVNGQ PAENYKNTQPIMDTDGSYFVYSKL NVQKSNWEAGNTFTCSVLHEGLH NHHTEKSLSHSPGK 37 Chaîne légère DIVMTQAAPSVPVTPGESVSISCR STKSLLHSNGNTYLYWFLQRPGQS PQLLIYYMSNPASGVPDRFSGSGS GTDFTLRISRVGAEDVGIYYCMQS LEYPVTFGAGTKLELKRADAAPTV SIFPPSSEQLTSGGASVVCFLNNF YPRDINVKVVKIDGSERQNGVLNSVV TDQDSKDSTYSMSSTLTLTKDEYE RHNSYTCEATHKTSTSPIVKSFNR NEC 38 1B1 Chaîne lourde QVQLQQPGADLVKPGASVKLSCKT SGYTFTNYWIQWIKQKPGQGLEWI 39 GEIDPSDRYTNYNQRFKGKATLTV DTSSSTAYMQLNSLTSEDSAVYYC TMYSFAYVVGQGTLVTVSAAKTTPP SVYPLAPGSAAQTNSMVTLGCLVK GYFPEPVTVTVVNSGSLSSGVHTFP AVLQSDLYTLSSSVTVPSSTVVPSQ TVTCNVAHPASSTKVDKKIVPRDC GCKPCICTVPEVSSVFIFPPKPKDV LTITLTPKVTCVVVDISKDDPEVQF SVVFVDDVEVHTAQTKPREEQINST FRSVSELPIMHQDVVLNGKEFKCRV NSAAFPAPIEKTISKTKGRPKAPQV YTIPPPKEQMAKDKVSLTCMITNFF PEDITVEVVQVVNGQPAENYKNTQPI MDTDGSYFVYSKLNVQKSNWEAG NTFTCSVLHEGLHNHHTEKSLSHS PGK Chaîne légère DVVMTQTPLTLSVTIGQPASISCKS SQSLLDSDGKTYLNWLLQSPGQSP 40 KLLIYLVSKLESGVPDRFSGSGSG TDFTLKISRVEAEDLGVYYCVQGA HLPQTFGSGTKLEIKRADAAPTVSI FPPSSEQLTSGGASVVCFLNNFYP RDINVKVVKIDGSERQNGVLNSVVTD QDSKDSTYSMSSTLTLTKDEYERH NSYTCEATHKTSTSPIVKSFNRNE C 18E1 Chaîne lourde QIQLVQSGPELKKPGETVKISCKA SGDTFTDYPMHVVVKQAPGKGLKVV 41 MGVVINAETAEPTYVDDFKGRFAFS LESSASTAYLQINNLKNEDTATYFC ASSYGYWGQGTLVTVSAAKTTAPS VYPLAPVCGDTTGSSVTLGCLVKG YFPEPVTLTVVNSGSLSSGVHTFPA VLQSDLYTLSSSVTVTSSTVVPSQS ITCNVAHPASSTKVDKKIEPRGPTI KPCPPCKCPAPNLLGGPSVFIFPP KIKDVLMISLSPIVTCVVVDVSEDD PDVQISVVFVNNVEVHTAQTQTHRE DYNSTLRVVSALPIQHQDWMSGKE FKCKVNNKDLPAPIERTISKPKGSV RAPQVYVLPPPEEEMTKKQVTLTC MVTDFMPEDIYVEVVTNNGKTELNY KNTEPVLDSDGSYFMYSKLRVEKK NVVVERNSYSCSVVHEGLHNHHTT KSFSRTPGK Chaîne légère DIVMTQTPLTLSVTIGQPASISCKS SQSLLYSDGKTYLNWLFQSPGQSP KLLIYLVSKLESGVPDRFSGSGSG TDFTLKISRVEAEDLGVYYCVQGS HFPHTFGSGTKLEINRADAAPTVSI FPPSSEQLTSGGASVVCFLNNFYP RDINVKVVKIDGSERQNGVLNSVVTD QDSKDSTYSMSSTLTLTKDEYERH NSYTCEATHKTSTSPIVKSFNRNE C 42 15G9 Chaîne lourde QVQLQQSGAELVRPGVSVKISCKG SGYTFTDYAMHWVKQSHAKSLEWI GVIRTYSGDATYNQKFKGKATMTV DKSSSTAYMELARLTSEDSAIYYC ATGFNYWGQGTTLTVSSAKTTPPS VYPLAPGCGDTTGSSVTLGCLVKG YFPESVTVTVVNSGSLSSSVHTFPA LLQSGLYTMSSSVTVPSSTWPSQT VTCSVAHPASSTTVDKKLEPSGPI STINPCPPCKECHKCPAPNLEGGP SVFIFPPNIKDVLMISLTPKVTCVV VDVSEDDPDVQISVVFVNNVEVHTA 43 QTQTHREDYNSTIRVVSTLPIQHQ DVVMSGKEFKCKVNNKDLPSPIERT ISKIKGLVRAPQVYILPPPAEQLSR KDVSLTCLVVGFNPGDISVEVVTSN GHTEENYKDTAPVLDSDGSYFIYS KLNMKTSKVVEKTDSFSCNVRHEG LKNYYLKKTISRSPGK Chaîne légère DVVMTQTPLTLSVTIGQPASISCKS SQSLLHSNGKTYLNWLLQRPGQSP KLLIYLVSKLESGVPDRFSGSGSG TDFTLKISRVEAEDLGLYYCLQATH FPHTFGSGTKLEI KRADAAPTVSI F PPSSEQLTSGGASVVCFLNNFYPR DINVKVVKIDGSERQNGVLNSVVTDQ DSKDSTYSMSSTLTLTKDEYERHN SYTCEATHKTSTSPIVKSFNRNEC 44 La présente invention concerne aussi un acide nucléique sélectionné parmi : a. ADN ou ARN codant pour un anticorps, ou un fragment fonctionnel, selon la présente invention ou ADN codant pour une chaîne lourde ou une chaîne légère d'un anticorps selon la présente invention, b. Séquence d'ADN comprenant SEQ ID 45, SEQ ID 46, SEQ ID 47, SEQ ID 48, SEQ 49, SEQ ID 50, SEQ ID 51, SEQ ID 52, SEQ ID 53, SEQ ID 54, SEQ ID 55, SEQ ID 56, SEQ ID 57, SEQ ID 58, SEQ ID 59, SEQ ID 60, SEQ ID 61, SEQ ID 62, SEQ ID 63, SEQ ID 64, SEQ ID 65, SEQ ID 66, SEQ ID 67, SEQ ID 68, SEQ ID 69, SEQ ID 70, SEQ ID 71, SEQ ID 72, SEQ ID 73, SEQ ID 74, SEQ ID 75, SEQ ID 76. c. Séquence d'ARN transcrit à partir d'une séquence d'ADN ci-dessus. La présente invention concerne aussi un vecteur comprenant une séquence acide nucléique selon l'invention. L'invention concerne aussi notamment un vecteur comprenant un ADN codant pour une chaîne lourde d'un anticorps selon la présente invention et un ADN codant pour une chaîne légère d'un anticorps selon la présente invention. Dans un mode de réalisation, la présente invention vise une cellule hôte contenant un vecteur comprenant une séquence d'acide nucléique selon l'invention. Les vecteurs selon la présente invention contiennent des éléments permettant l'expression des séquences nucléiques dans la cellule hôte. Le terme vecteur utilisé ici se réfère à une séquence d'acide nucléique capable de transporter une autre séquence d'acide nucléique auquel il a été attaché/lié. Par exemple, il peut s'agir d'un plasmide ou de vecteurs viraux. Tableau 3 : Séquences SEQ ID N° des séquences nucléotidiques des composantes des anticorps selon l'invention Anticorps Chaine lourde Chaine légère Séquence nucléotidique SEQ ID N° 1B1 CDR1H1 GGCTACACCTTCACCAACTACTGG 45 CDR1H2 ATTGATCCTTCTGATAGATATACT 46 CDR1H3 ACAATGTATTCGTTTGCTTAC 47 CDR1L1 CAGAGCCTCTTAGATAGTGATGGAAAAAC CTAT 48 CDR1L2 CTGGTGTCT 49 CDR1L3 GTGCAAGGTGCACATCTCCCTCAAACG 50 Domaine variable chaine lourde CAGGTCCAACTGCAGCAGCCTGGGGCTG ACCTTGTGAAGCCTGGGGCTTCAGTGAA GCTCTCCTGCAAGACCTCTGGCTACACCT TCACCAACTACTGGATACAGTGGATAAAA CAGAAGCCTGGACAGGGCCTTGAGTGGA TCGGAGAGATTGATCCTTCTGATAGATAT ACTAATTACAATCAAAGATTCAAGGGCAA GGCCACATTGACTGTAGACACATCCTCCA GCACAGCCTACATGCAGCTCAACAGCCTA ACATCTGAGGACTCTGCGGTCTATTACTG TACAATGTATTCGTTTGCTTACTGGGGCC AAGGGACTCTGGTCACTGTCTCTGCA 51 Domaine variable chaine légère GATGTTGTGATGACCCAGACTCCACTCAC TTTGTCTGTTACCATTGGACAGCCAGCTT CCATTTCTTGCAAGTCAAGTCAGAGCCTC TTAGATAGTGATGGAAAAACCTATTTGAAT TGGTTATTACAGAGTCCAGGCCAGTCTCC AAAGCTCTTAATCTATCTGGTGTCTAAGCT GGAATCTGGAGTCCCTGACAGATTCAGTG GCAGTGGATCAGGGACAGATTTTACACTG AAAATCAGCAGAGTGGAGGCTGAGGATTT GGGAGTTTATTACTGCGTGCAAGGTGCAC ATCTCCCTCAAACGTTCGGATCGGGGAC CAAACTGGAAATAAAACGG 52 Anticorps Chaine lourde Chaine légère Séquence nucléotidique SEQ ID N° 18E1 CDR1H1 GGTGACACCTTCACAGACTATCCA 53 CDR1H2 ATAAACGCTGAGACTGCTGAGCCA 54 CDR1H3 GCTAGTTCCTATGGTTAC 55 CDR1L1 CAGAGCCTCTTATATAGTGATGGAAAAAC CTAT 56 CDR1L2 CTGGTGTCT 57 CDR1L3 GTGCAAGGTTCACATTTCCCTCATACG 58 Domaine variable chai ne lourde CAGATCCAGTTGGTGCAGTCTGGACCTG AGCTGAAGAAGCCTGGAGAGACAGTCAA GATCTCCTGCAAGGCTTCTGGTGACACCT TCACAGACTATCCAATGCACTGGGTGAAG CAGGCTCCAGGAAAGGGTTTAAAGTGGA TGGGCTGGATAAACGCTGAGACTGCTGA GCCAACATATGTAGACGACTTCAAGGGAC GGTTTGCCTTCTCTTTGGAATCCTCTGCC AGCACTGCCTATTTGCAGATCAACAACCT CAAAAATGAGGACACGGCTACATATTTCT GTGCTAGTTCCTATGGTTACTGGGGCCAA GGGACTCTGGTCACTGTCTCTGCA 59 Domaine variable chai ne légère GATATTGTGATGACCCAGACTCCACTCAC TTTGTCTGTTACCATTGGACAGCCAGCTT CCATTTCTTGCAAGTCAAGTCAGAGCCTC TTATATAGTGATGGAAAAACCTATTTGAAT TGGTTATTCCAGAGTCCAGGCCAGTCTCC AAAGCTCTTAATCTATCTGGTGTCTAAACT GGAATCTGGAGTCCCTGACAGATTCAGTG GCAGTGGATCAGGGACAGATTTTACACTG AAAATCAGCAGAGTGGAGGCTGAGGATTT GGGAGTTTATTACTGCGTGCAAGGTTCAC ATTTCCCTCATACGTTCGGATCGGGGACC AAGCTGGAAATAAACCGG 60 Anticorps Chaine lourde Chaine légère Séquence nucléotidique SEQ ID N° 15G9 CDR1H1 GGCTACACATTCACTGATTATGCT 61 CDR1H2 ATTCGTACTTACTCTGGTGATGCT 62 CDR1H3 GCAACCGGGTTTAACTAC 63 CDR1L1 CAGAGCCTCTTACATAGTAATGGAAAGAC ATAT 64 CDR1L2 CTGGTGTCT 65 CDR1L3 TTGCAAGCTACACATTTTCCTCATACG 66 Domaine variable chai ne lourde CAGGTCCAGCTGCAGCAGTCTGGGGCTG AGCTGGTGAGGCCTGGGGTCTCAGTGAA GATTTCCTGCAAGGGTTCTGGCTACACAT TCACTGATTATGCTATGCACTGGGTGAAG CAGAGTCATGCAAAGAGTCTAGAGTGGAT TGGAGTTATTCGTACTTACTCTGGTGATG CTACCTACAACCAGAAGTTCAAGGGCAAG GCCACAATGACTGTAGACAAATCCTCCAG CACAGCCTATATGGAACTTGCCAGACTGA CATCTGAGGATTCTGCCATCTATTACTGT GCAACCGGGTTTAACTACTGGGGCCAAG GCACCACTCTCACAGTCTCCTCA 67 Domaine variable chai ne légère GATGTTGTGATGACTCAGACCCCACTCAC TTTGTCGGTTACCATTGGACAACCAGCCT CCATCTCTTGCAAATCAAGTCAGAGCCTC TTACATAGTAATGGAAAGACATATTTGAAT TGGTTATTACAGAGGCCAGGCCAGTCTCC AAAGCTCTTAATCTATCTGGTGTCTAAACT GGAATCTGGAGTCCCTGACAGGTTCAGT GGCAGTGGATCAGGGACAGATTTCACAC TGAAAATCAGCAGAGTGGAGGCTGAGGA TTTGGGACTTTATTACTGCTTGCAAGCTA CACATTTTCCTCATACGTTCGGATCGGGG ACCAAGCTGGAAATAAAACGG 68 Anticorps Chaine lourde Chaine légère Séquence nucléotidique SEQ ID N° 10B2 CDR1H1 GGATACACGTTCACTGATTACTAC 69 CDR1H2 ATTAATCCTAATAATGGTGGTAGT 70 CDR1H3 GCAAGAGGCGATTACTCCGGTACTAGTTT CGTTATGTTTGCTCAC 71 CDR1L1 AAGAGTCTTCTGCACAGTAATGGCAACAC TTAC 72 CDR1L2 TATATGTCC 73 CDR1L3 ATGCAAAGTCTAGAATATCCTGTCACG 74 Domaine variable chai ne lourde GAGGTCCAGCTGCAACAATCTGGACCTG AGCTGGTGAAGCCTGGGGCCTCAGTTAA GATTTCCTGTAAGGCTTCTGGATACACGT TCACTGATTACTACATGAACTGGGTGAAG CAGAGCCATGGAAAGACCCTTGAGTGGA 75 TTGGAGATATTAATCCTAATAATGGTGGTA GTCACTACAACCAGAAGTTCAGGGGCAA GGCCACATTGACTATAGACAAGTCCTCCA GTACAGCCTACATGGACCTCCGCAGCCT GACATCTGAAGACTCTGCAGTCTATTACT GTGCAAGAGGCGATTACTCCGGTACTAGT TTCGTTATGTTTGCTCACTGGGGCCAAGG GACTCTGGTCACTGTCTCTGCA GATATTGTGATGACTCAGGCTGCACCCTC 76 TGTACCTGTCACTCCTGGAGAGTCAGTAT Domaine variable chai ne légère CCATCTCCTGCAGGTCTACTAAGAGTCTT CTGCACAGTAATGGCAACACTTACTTGTA TTGGTTCCTGCAGAGGCCAGGCCAGTCT CCTCAACTCCTGATATATTATATGTCCAAC CCTGCCTCAGGAGTCCCAGACAGGTTCA GTGGCAGTGGGTCAGGAACTGATTTCAC ACTGAGGATCAGTCGAGTGGGGGCTGAG GATGTAGGTATTTATTACTGTATGCAAAGT CTAGAATATCCTGTCACGTTCGGTGCGGG GACCAAGCTGGAGCTGAAACGG La présente invention concerne aussi une cellule hôte transformée/transfectée/transduite par ou comprenant un vecteur selon l'invention. La cellule hôte selon l'invention peut être une cellule procaryote ou eucaryote, par exemple une bactérie, une levure, une cellule animale, en particulier une cellule de mammifère. Un autre aspect de la présente invention comprend une méthode de production d'un anticorps selon l'invention, ou un fragment fonctionnel ayant des propriétés de liaison antigéniques, caractérisée en ce que cette méthode comprend les étapes suivantes : faire croitre une cellule hôte selon l'invention dans un milieu approprié et dans des conditions appropriées, récupérer l'anticorps ou un fragment fonctionnel ayant des propriétés de liaison antigéniques. La récupération pourra se faire par tout moyen de purification classique connu de l'homme du métier tel que la chromatographie, par exemple. Les anticorps selon la présente invention présentent la propriété particulière de pouvoir se lier au domaine central de l'ADN polymérase Pol Thêta sous forme entière, et non seulement une forme tronquée et ce en western blot ou dans son environnement cellulaire, plus particulièrement au sein d'une coupe histologique de tissus et révélé en immunohistochimie en particulier. La présente invention concerne des anticorps tels que décrits supra pour leur utilisation in vitro ou ex vivo à des fins de diagnostic et/ou de pronostic d'un désordre pathologique hyperprolifératif associé à l'expression de l'ADN polymérase Pol Thêta. Plus particulièrement l'expression de l'ADN polymérase Pol Thêta est une expression aberrante. Plus particulièrement encore, l'expression aberrante de l'ADN Polymérase Pol Thêta est une surexpression. Dans un mode de réalisation particulier, le désordre pathologique hyperprolifératif est un cancer. La présente invention concerne une méthode pour déterminer in vitro ou ex vivo la présence d'une tumeur sur-exprimant l'ADN polymérase Pol Thêta chez un sujet comprenant les étapes suivantes : a. Mettre en contact un échantillon biologique obtenu du sujet avec un anticorps selon la présente invention, b. Détecter la liaison de l'anticorps avec l'ADN polymérase Pol Thêta au sein de l'échantillon. L'expression «diagnostic» s'entend dans le contexte de la présente invention comme définissant un procédé d'identification ou de détection de la présence d'un désordre pathologique hyperprolifératif, en particulier un cancer, associé à ou provoqué par l'expression, en particulier l'expression aberrante, plus particulièrement encore la surexpression, de l'ADN polymérase Pol Thêta. La notion de diagnostic englobe la notion de surveillance de la progression de la maladie ainsi que l'identification de cellules, de tissus ou d'échantillons indicateurs d'un désordre associé à ou provoqué par l'expression, en particulier l'expression aberrante, plus particulièrement encore la surexpression, de l'ADN polymérase Pol Thêta. La notion de pronostic s'entend dans le contexte de la présente invention, comme la probabilité ou la prédiction ou la prédisposition au développement d'une maladie de type désordre pathologique hyperprolifératif, en particulier un cancer. Cette notion de pronostic inclut aussi le pronostic sur l'issue d'une telle maladie. En particulier, si un échantillon obtenu à partir d'un sujet est négatif sur la base d'une révélation avec un anticorps selon la présente invention, alors le pronostic pour ce sujet est meilleur que si l'échantillon est positif. Les échantillons obtenus à partir d'un sujet peuvent être évalués quant au niveau d'expression de l'ADN polymérase Pol Thêta selon une échelle telle que décrit ci-après. Tel qu'indiqué ci avant, les anticorps selon la présente invention peuvent être sous la forme d'immunoconjugué ou d'anticorps marqué afin d'obtenir un signal détectable et/ou quantifiable. Lorsqu'ils sont utilisés - marqués ou conjugués - avec tout autre réactif détectable approprié, les anticorps selon la présente invention sont particulièrement adaptés pour des applications de diagnostic ou pronostic in vitro ou ex vivo mettant en oeuvre des techniques d'immunohistochimie ou d'immunofluorescence. Dans le contexte de la présente invention, l'expression « désordre pathologique hyperprolifératif associé à l'expression de l'ADN polymérase Pol Thêta » se réfère à une maladie pour laquelle la présence de hauts niveaux, ou niveaux aberrants, d'expression de l'ADN polymérase Pol Thêta, chez un sujet souffrant d'une telle maladie, a été mise en évidence. De tels désordres peuvent être ainsi mis en évidence par une augmentation du niveau d'expression de l'ADN polymérase Pol Thêta par l'utilisation d'anticorps selon la présente invention. C'est ainsi un objet de la présente invention que de fournir une méthode pour déterminer in vitro ou ex vivo le niveau d'expression de l'ADN polymérase Pol Thêta chez un sujet comprenant les étapes suivantes : a. mettre en contact un échantillon biologique obtenu du sujet avec un anticorps selon la présente invention, b. quantifier le niveau d'expression de l'ADN Polymérase Pol Thêta au sein de l'échantillon. Dans le contexte de la présente invention, le niveau d'expression de l'ADN Polymérase Pol Thêta est évalué via la liaison des anticorps avec la protéine. Plus la protéine est présente, plus il y aura de liaisons détectables et plus l'intensité du signal sera importante. C'est encore un objet de la présente invention que de fournir une méthode pour évaluer in vitro ou ex vivo la gravité ou l'agressivité d'une tumeur ou d'un cancer chez un sujet comprenant les étapes suivantes : a. mettre en contact un échantillon biologique de tumeur obtenu du sujet avec un anticorps selon la présente invention, b. quantifier le niveau d'expression de l'ADN polymérase Pol Thêta au sein de l'échantillon, c. évaluer la tumeur ou le cancer par comparaison du niveau d'expression de l'ADN polymérase Pol Thêta à une échelle. Selon la présente invention, l'expression «agressivité» d'un cancer ou d'une tumeur s'entend comme étant la propension de ce cancer ou de cette tumeur à envahir les tissus voisins et de générer des métastases ainsi que la rapidité avec laquelle ces invasions se manifestent. L'agressivité est bien sûr liée au taux de survie et la méthode selon l'invention peut aussi servir au pronostic de survie du patient. Dans un tel cas de figure, un diagnostic d'agressivité signifie un mauvais pronostic de survie et l'absence d'agressivité signifie un bon pronostic de survie. Un diagnostic d'agressivité ou d'absence d'agressivité s'évalue via une échelle en comparant le niveau d'expression de l'ADN Polymérase Pol Thêta au sein de l'échantillon par rapport à des témoins positifs ou négatifs. En particulier, selon la présente invention, la détection, au sein de l'échantillon est réalisée par immunohistochimie. C'est un objet de la présente invention que de fournir une méthode telle que décrite ci-avant dans laquelle la détection de la liaison de l'anticorps ou la quantification du niveau d'expression de l'ADN Polymérase Pol Thêta au sein de l'échantillon est réalisée par immunohistochimie Dans une autre forme de réalisation, l'invention concerne une méthode de détection de cellules cancéreuses présentant une instabilité génétique. L'expression dérégulée de l'ADN polymérase Pol Thêta mène à une augmentation des dommages à l'ADN et une instabilité chromosomique, ce qui déclenche l'activation constitutive de « [gamma]H2AX-ATM-CH K2 DNA damage checkpoint ». L'expression "instabilité génétique" d'un cancer signifie la propension des cellules tumorales du cancer à souffrir de dommages de l'ADN. Par l'expression "dommages à l'ADN" il est entendu une ou des modifications de l'ADN affectant le fonctionnement normal de l'ADN en causant la création de liaisons covalentes ou en modifiant des liaisons covalentes et entrainant un ou des changements dans la conformation normale en double hélice de l'ADN. De tels changements entrainent à leur tour des distorsions de structure interférant avec la réplication et la transcription. Généralement, lorsque une cellule subit un dommage à l'ADN, le cycle cellulaire est stoppé ce qui peut mener à l'activation d'un processus de réparation de l'ADN (en cas de dommage mineur) ou à l'apoptose (en cas de dommage majeur). Les dommages à l'ADN peuvent arriver de manière spontanée ou être induits par des facteurs environnementaux tels que les radiations (rayons X, UV, rayons gamma ou radiothérapie), les toxines (par exemple les toxines des plantes ou les toxines de synthèse) mais aussi par les drogues telles que les chimiothérapies anticancéreuses. Ainsi, la présente invention fournit une méthode pour le diagnostic de l'instabilité d'un cancer chez un sujet à partir d'un échantillon cancéreux d'un tel sujet comprenant : a. mettre en contact un anticorps selon l'invention avec un échantillon cancéreux obtenu du sujet b. quantifier le niveau d'expression de l'ADN polymérase Pol Thêta dans l'échantillon testé c. quantifier le niveau d'expression de l'ADN polymérase Pol Thêta dans un échantillon sain du même sujet d. mesurer le ratio entre le niveau d'expression obtenu à l'étape b et le niveau obtenu à l'étape c, dans laquelle le ratio fourni une information sur l'instabilité génétique du cancer. Dans un mode de réalisation particulier, un ratio supérieur à 1 indique un risque, ou un risque accru, d'instabilité génétique du cancer. A contrario, un ratio inférieur ou égal à 1 indique un risque faible ou une absence de risque d'instabilité génétique du cancer. Dans un mode particulier, le niveau d'expression de l'ADN polymérase Pol Thêta est évalué en immunohistochimie selon l'échelle ALLRED. Dans un mode de réalisation particulier, un ratio supérieur à 1,5 indique un risque, ou un risque accru, d'instabilité génétique du cancer. A contrario, un ratio inférieur ou égal à 1,5 indique un risque faible ou une absence de risque d'instabilité génétique du cancer. Dans un autre mode de réalisation particulier, un ratio supérieur à 2 indique un risque, ou un risque accru, d'instabilité génétique du cancer. A contrario, un ratio inférieur ou égal à 2 indique un risque faible ou une absence de risque d'instabilité génétique du cancer. L'expression « échantillon sain » s'entend ici, dans le contexte de la présente description, comme d'un échantillon non cancéreux. De manière préférée, la quantification du niveau de liaison de l'anticorps à l'ADN Polymérase Pol Thêta et/ou du niveau d'expression de l'ADN Polymérase Pol Thêta est réalisée via l'échelle appropriée, telle que par exemple l'échelle ALLRED. Dans une forme de réalisation particulière de l'invention, l'échelle appropriée, par exemple l'échelle ALLRED, est basée sur deux paramètres qui sont l'intensité de la coloration et le pourcentage de cellules positives. De manière encore plus préférentielle de réalisation, l'échelle appropriée, telle que l'échelle ALLRED, est une échelle de 0 à 8 dans laquelle « sans réactivité » est évaluée au niveau 0, et une forte réactivité dans une proportion de « 67 à 100% réactif » est évaluée au niveau 8 Une fois la quantification du niveau de liaison de l'anticorps à l'ADN polymérase Pol Thêta, reflétant la quantité d'ADN polymérase Pol Thêta présente dans l'échantillon et donc le niveau d'expression de l'ADN Polymérase Pol Thêta dans l'échantillon, le résultat peut être comparé à celui obtenu à partir d'un échantillon témoin, normal, obtenu, préparé et traité de la même manière mais à partir d'un sujet qui ne présente pas de désordre pathologique hyperprolifératif tel que cancer. Dans un mode de réalisation particulier, l'échantillon témoin - préparé et traité de la même manière - est obtenu à partir du même sujet et provient d'un tissu non cancéreux de ce même sujet. Un tel échantillon témoin est considéré comme un témoin négatif et son score dans une échelle ALLRED serait de zéro ou proche de zéro. Si le niveau mesuré est significativement plus élevé dans l'échantillon testé par rapport à l'échantillon témoin, il peut être conclu que le sujet a un mauvais pronostic de survie ou que l'échantillon cancéreux est génétiquement instable. Un niveau significativement plus élevé correspond par exemple au niveau 3 et au-delà de l'échelle ALLRED, particulièrement au niveau 5 et au-delà de l'échelle ALLRED. En ce qui concerne le développement de thérapie anticancéreuse ciblée, le diagnostic à l'aide de méthodes immunohistochimiques selon l'invention donne des informations cruciales sur le niveau d'expression de l'ADN Polymérase Pol Thêta et permet la sélection de patient, ou de déterminer l'éligibilité de patient, pour un traitement de chimiothérapie, en particulier un traitement de chimiothérapie adjuvant, ou un traitement de radiothérapie. En effet, la capacité pronostique et prédictive de l'évolution d'un cancer selon les méthodes de la présente invention qui est associée à la détermination de l'agressivité dudit cancer est cruciale pour la sélection du traitement adéquat sachant que des traitements lourds et couteux avec des effets secondaires sévères, en complément des traitements chirurgicaux, ne devraient être utilisés que lorsqu'ils sont nécessaires et seulement lorsqu'ils sont nécessaires. La présente invention concerne ainsi une méthode pour sélectionner un traitement adéquat d'un cancer chez un patient ayant subi un traitement chirurgical, comprenant : - diagnostiquer l'agressivité ou la non agressivité d'un cancer chez un patient en utilisant la méthode selon l'invention et - ajouter un traitement de chimiothérapie ou radiothérapie au traitement chirurgical si ledit cancer est diagnostiqué comme agressif. L'évaluation de l'agressivité ou de la gravité d'un cancer selon une méthode telle que décrite plus avant peut être réalisée par comparaison du niveau quantifié d'expression de l'ADN polymérase Pol Thêta à une échelle. Particulièrement il peut s'agir par exemple de l'échelle ALLRED. Dans une forme encore simplifiée, cette évaluation peut aussi être catégorisée en négative ou positive par un examen visuel des échantillons d'immunohistochimie par un spécialiste en anatomopathologie. Une approche plus objective et quantitative de l'évaluation du niveau d'expression de l'ADN polymérase Pol Thêta peut être réalisée via la mesure de deux paramètres qui sont la proportion de cellules colorées et l'intensité de ladite coloration (c'est-à-dire positives) au sein de l'échantillon testé. Dans un mode de réalisation particulier d'une méthode selon l'invention, la quantification du niveau d'expression de l'ADN polymérase Pol Thêta est réalisée selon l'échelle ALLRED. Cette échelle est basée sur la combinaison de deux paramètres : l'intensité de la coloration et le pourcentage de cellules colorées (Harvey et al ; J Clin. Oncol. 1999 ; 17 ; 1474-1481). Le tableau 4 illustre l'utilisation de résultats d'immunohistochimie selon l'échelle ALLRED.35 Tableau 4 : Evaluation des scores de résultats d'immunohistochimie selon échelle ALLRED. Intensité de la Score 1 Proportion de Score 2 réaction cellules réactives Aucune réactivité 0 Aucune 0 Réactivité faible 1 0-1% 1 Réactivité modérée 2 1-10% 2 Forte réactivité 3 11-33% 3 34-67% 4 67-100% 5 SCORE TOTAL Interprétation (Score 1 + Score 2) 0-2 Négatif 3-8 Positif Ainsi dans une méthode selon la présente invention, un score total compris entre 0 et 2 pourra être compris comme négatif en ce qui concerne l'agressivité du cancer par exemple et un score compris entre 3 et 8 pourra être considéré comme positif en ce qui concerne l'agressivité du cancer. C'est un autre objet de la présente invention que de fournir une méthode d'évaluation du statut d'une tumeur chez un sujet, in vitro ou ex vivo, comprenant les étapes : - mettre en contact un échantillon de tumeur obtenu du sujet avec un anticorps selon la présente invention, en immunohistochimie, - mesurer le score de la tumeur sur l'échelle ALLRED entre 0 et 8 - déterminer que la tumeur a un statut POLQ(-) (ou Pol Thêta -) si le score est compris entre 0 et 2, - déterminer que la tumeur a un statut POLQ(+) (ou Pol Thêta +) si le score est compris entre 3 et 8. Dans un aspect particulier, on détermine que la tumeur a un statut POLQ(+) si le score est de 3. Dans un aspect particulier, on détermine que la tumeur a un statut POLQ(+) si le score est de 4. Dans un aspect particulier, on détermine que la tumeur a un statut POLQ(+) si le score est de 5. Dans un aspect particulier, on détermine que la tumeur a un statut POLQ(+) si le score est de 6. Dans un aspect particulier, on détermine que la tumeur a un statut POLQ(+) si le score est de 7. Dans un aspect particulier, on détermine que la tumeur a un statut POLQ(+) si le score est de 8. L'expression POLQ(+) (ou Pol Thêta +) signifie que l'échantillon évalué 10 présente une expression aberrante de l'ADN polymérase Pol Thêta, plus particulièrement une surexpression de l'ADN polymérase Pol Thêta. L'expression POLQ(-) (ou Pol Thêta -) signifie que l'échantillon évalué ne présente pas une expression aberrante de l'ADN polymérase Pol Thêta, plus particulièrement ne présente pas une surexpression de l'ADN polymérase Pol Thêta. 15 Le test ALLRED présenté ici représente une méthode de quantification parmi d'autres et l'homme du métier ne sera pas limité pour l'évaluation de l'expression de l'ADN polymérase Pol Thêta dans l'échantillon testé et toute autre méthode visant à conclure quant à l'expression aberrante, en particulier la surexpression, de cette protéine pourra être envisagée. 20 La présente invention fournit aussi une méthode d'évaluation du risque de développement ou de progression d'un cancer chez un patient, cette méthode comprenant la mesure du niveau d'expression de l'ADN polymérase Pol Thêta dans un échantillon biologique obtenu du patient. Ainsi l'invention concerne une méthode d'évaluation du risque de développement ou 25 de progression d'un cancer chez un sujet, comprenant les étapes : a. mettre en contact un anticorps selon l'invention avec un échantillon cancéreux obtenu du sujet b. quantifier le niveau d'expression de l'ADN polymérase Pol Thêta dans l'échantillon testé 30 c. quantifier le niveau d'expression de l'ADN polymérase Pol Thêta dans un échantillon équivalent du même sujet à un moment plus tardif d. mesurer le ratio entre le niveau d'expression obtenu à l'étape b et le niveau obtenu à l'étape c, dans laquelle le ratio fourni une information sur le risque de développement ou de 35 progression du cancer. Dans un mode de réalisation particulier, un ratio inférieur à 1 indique un risque, ou un risque accru, de développement ou de progression d'un cancer. A contrario, un ratio supérieur ou égal à 1 indique un risque faible ou une absence de risque de développement ou de progression d'un cancer. Dans un mode de réalisation plus particulier, un ratio inférieur à 1,5 indique un risque, ou un risque accru, de développement ou de progression d'un cancer. A contrario, un ratio supérieur ou égal à 1,5 indique un risque faible ou une absence de risque de développement ou de progression d'un cancer. Dans un mode de réalisation plus particulier, un ratio inférieur à 2 indique un risque, ou un risque accru de développement ou de progression d'un cancer. A contrario, un ratio supérieur ou égal à 2 indique un risque faible ou une absence de risque de développement ou de progression d'un cancer. Dans un mode particulier, le niveau d'expression de l'ADN polymérase Pol Thêta est évalué en immunohistochimie selon l'échelle ALLRED. Dans le contexte de la description, par l'expression «échantillon cancéreux », il est fait référence ici à un échantillon de tissu tumoral. L'échantillon cancéreux, ou l'échantillon de cancer, peut être un échantillon de cancer solide provenant d'une biopsie ou d'une thérapie chirurgicale de résection. L'échantillon de cancer solide est un échantillon contenant des cellules cancéreuses et peut être préparé selon des techniques usuelles histologiques connues de l'homme du métier afin de préparer cet échantillon pour son évaluation en immunohistochimie ou en immunofluorescence, par exemple. Dans le cadre de la présente invention, le terme cancer signifie une condition physiologique caractérisée par une hyperprolifération cellulaire, plus particulièrement une hyperprolifération pathologique. Les termes "cancer" ou "cancéreux" correspondent ici à tous les stades de la maladie. Avantageusement, le cancer est un cancer à un stade précoce ou moyennement avancé. Par les expressions « précoce » ou « moyennement avancé », on entend ici un cancer dont le stade est compris entre le stade IA et le stade IIIA. Dans un mode de réalisation préféré de la présente invention, le cancer est un cancer à un stade précoce. Plus particulièrement, un cancer selon la présente invention peut être choisi parmi le cancer du poumon, le cancer du poumon à petites cellules, le cancer du poumon non-à petites cellules, l'adénocarcinome du poumon, le cancer gastrointestinal, le cancer du pancréas, le cancer de la prostate, le cancer de la vessie, le cancer du foie, le cancer des ovaires, le cancer colorectal, le cancer du sein, le cancer du rein, le cancer du côlon, le cancer du cerveau, le cancer de la tête et du cou, le cancer de l'endomètre, le cancer des glandes salivaires, le cancer de la thyroïde, l'hépatocarcinome, les mélanomes, les mélanomes nodulaires, les lymphomes, les lymphomes non-Hodgkiniens (NHL), les leucémies, les leucémies lymphoblastiques, les leucémies myeloblastiques, les désordres myeloprolifératifs et les désordres lymphoprolifératifs post transplantation. De manière particulière, le cancer est sélectionné parmi le cancer du sein, le cancer du côlon, le cancer du poumon, le cancer du poumon à petites cellules et le cancer du poumon non-à petites cellules. De manière préférée, le cancer est le cancer du sein. De manière préférée, le cancer est le cancer du côlon. De manière préférée, le cancer est le cancer du poumon. Dans les méthodes selon l'invention, le niveau d'expression de l'ADN polymérase Pol Thêta peut avantageusement être comparé ou mesuré en relation avec les niveaux d'expression dans un échantillon de référence ou échantillon témoin qui correspond à un échantillon non pathologique, c'est-à-dire non cancéreux. Cet échantillon témoin ou de référence peut provenir du même patient et dans ce cas ledit échantillon témoin est non cancéreux. Cet échantillon peut aussi provenir d'un autre patient qui n'est pas atteint par un cancer. Le niveau d'expression dans l'échantillon témoin est évalué selon la même technique et la même méthodologie que l'échantillon cancéreux. Les hybridomes capables de produire les anticorps selon l'invention ont été déposés à la CNCM, Institut Pasteur, Paris, France, sous les numéros et jour suivants : L'hybridome 1B1-3D4-2C5 capable de produire l'anticorps 1B1 a été déposé sous le numéro CNCM 1-4824, le 3 décembre 2013. L'hybridome 18E1-3E12 capable de produire l'anticorps 18E1 a été déposé sous le numéro CNCM 1-4827, le 3 décembre 2013. L'hybridome 10B2-3B10-3D1 capable de produire l'anticorps 10B2 a été 30 déposé sous le numéro CNCM 1-4825, le 3 décembre 2013. L'hybridome 15G9-3D5 capable de produire l'anticorps 15G9 a été déposé sous le numéro CNCM 1-4826, le 3 décembre 2013. L'anticorps monoclonal, désigné ici par 1B1, ou ses dérivés ou fragments fonctionnels, est caractérisé en ce qu'il est sécrété par l'hybridome 1B1-3D4-2C5, 35 CNCM 1-4824. L'anticorps monoclonal, désigné ici par 18E1, ou ses dérivés ou fragments fonctionnels, est caractérisé en ce qu'il est sécrété par l'hybridome 18E1-3E12, CNCM 1-4827. L'anticorps monoclonal, désigné ici par 10B2, ou ses dérivés ou fragments fonctionnels, est caractérisé en ce qu'il est sécrété par l'hybridome 10B2-3B10-3D1, CNCM 1-4825. L'anticorps monoclonal, désigné ici par 15G9, ou ses dérivés ou fragments fonctionnels, est caractérisé en ce qu'il est sécrété par l'hybridome 15G9-3D5, CNCM 1-4826. Un autre objet de la présente invention comprend un kit, c'est-à-dire un ensemble de réactifs emballés en quantité prédéterminée avec instructions d'usage afin de réaliser des essais de diagnostic et/ou de pronostic selon les méthodes de la présente invention. Un kit selon l'invention peut comprendre au moins un anticorps selon la présente invention pour la détection et/ou la quantification de l'expression de l'ADN polymérase Pol Thêta in vitro ou ex vivo. De manière préférentielle, le kit est destiné à un usage en immunohistochimie ou immunofluorescence. Dans un mode particulier de réalisation de l'invention, un anticorps selon l'invention est marqué, par exemple par une enzyme et le kit peut comprendre les substrats et cofacteurs nécessaires. Selon un autre aspect de réalisation de l'invention, les anticorps selon la présente invention, ou leurs fragments fonctionnels tels que décrits supra, sont marqués avec une partie détectable de manière à être préparés et commercialisés sous forme de kit pour l'identification et/ou pour le diagnostic de tissus ou de cellules selon une des méthodes selon la présente invention ici décrite. Des exemples non limitatifs de tels marquages comprennent les fluorophores tels que l'isothiocyanate de fluorescéine; des chromophores, des radionucléotides, biotine ou enzymes. Les anticorps selon l'invention ainsi marqués peuvent être utilisés pour les tests de localisation histologique de l'ADN Polymérase Pol Thêta sur des échantillons tissulaires, particulièrement en immunohistochimie ou immunofluorescence. Dans une forme particulière de l'invention, le kit selon l'invention comprend un réactif pour détecter la liaison de l'anticorps à l'ADN polymérase Pol Thêta. Dans un autre mode de réalisation de l'invention, le kit comprend un réactif pour quantifier le niveau de liaison de l'anticorps selon l'invention avec l'ADN polymérase Pol Thêta. Dans une autre forme de réalisation de l'invention, le kit comprend en outre un anticorps monoclonal ou polyclonal reconnaissant les anticorps murins. De manière avantageuse, cet anticorps monoclonal ou polyclonal est marqué. Les exemples suivants servent à illustrer les différents aspects de l'invention. Exemple 1 : Peptides antigéniques & production des anticorps selon l'invention Les trois peptides suivants ont été utilisés pour réaliser l'immunisation de souris OF1 afin de produire les anticorps selon l'invention Peptides Séquence amino acide SEQ ID N° Peptide 1 CKHSPNIVQDLNKSREHTSS 1 Peptide 2 CSIFRARKRASLDINKEKPG 2 Peptide 3 CLQEDLIKKSNVNENQDTH 3 Peptide 4 HDETSSLLPRKESNIVDDNGC 4 Les peptides sont couplés à la KLH (aux fins d'immunisation) et à la BSA (pour criblage des hybridomes). 3 souris sont immunisées avec le mélange KLH-peptides 1 + 2 et 3 souris sont immunisées avec le mélange KLH-peptide 4. Les sérums sont prélevés et testés pour la reconnaissance des peptides libres par Elisa et de l'ADN Polymérase Pol Thêta sous sa forme pleine taille par western blot. Les peptides 1 et 4 comprennent un C en position 1 et en position terminale, respectivement. Ce résidu cystéine n'est pas présent dans la séquence de POLQ et cet acide aminé a été ajouté pour faciliter l'immunisation. Les anticorps reconnaissent bien cette séquence mais cependant dans la séquence de POLQ il n'y a pas ce résidu cystéine. Les meilleures souris sont retenues pour la fusion de leurs lymphocytes avec des cellules du myélome Sp2/0-Ag14. Les clones sont criblés, sélectionnés par test ELISA sur les peptides couplés à la BSA puis testés pour leur capacité à reconnaitre l'ADN Polymérase Thêta en western blot et immunofluorescence sur cellules de mammifère. Les hybridomes sélectionnés après sous clonage et stabilisation 1B1-3D4-2C5 ; 18E1-3E12 ; 10B23B10-3D1 et 15G9-3D5 ont été utilisés pour la production et purification des anticorps 1B1, 18E1, 10B2 et 15G9, respectivement.30 Exemple 2 : Immunodétection par western blot de l'ADN polymérase Thêta ectopique sur des fibroblastes pulmonaires surexprimant stablement l'ADN polymérase Thêta. Légende de la figure 1 Figure 1 : (A) Révélation par western blot de l'ADN polymérase Thêta ectopique sous sa forme pleine taille grâce à l'utilisation des anticorps anti-Pol Thêta 1B1, 10B2, 18E1 et 15G9, dans des fibroblastes de poumon MRC5-SV surexprimant (Q14) ou non (CtrI2) Pol Thêta de façon stable. (B) La spécificité du signal généré par les anticorps anti-Pol Thêta 1B1 et 10B2 a été confirmée dans les fibroblastes de poumons surexprimant stablement Pol Thêta (MRC5-SV-POLQ : Q14), 24h après transfection par un siRNA contrôle dirigé contre la luciférase (siRNA LUC) ou un siRNA dirigé spécifiquement contre POLQ (siRNA POLQ). Résultats L'utilisation des anticorps anti-Pol Thêta 1B1, 10B2, 18E1 et 15G9 provenant des surnageants des hybridomes permettent la détection de l'ADN polymérase Thêta ectopique sous sa forme pleine taille dans les cellules MRC5-SV-POLQ (Q14) surexprimant la protéine Pol Thêta de façon stable, en comparaison avec les cellules qui ne la surexpriment pas (cellules CtrI2 transfectées par le vecteur vide) (Figure 1-A). La spécificité des anticorps 1B1 et 10B2 pour Pol Thêta a été confirmée dans les échantillons Q14 grâce à l'utilisation de siRNA dirigés spécifiquement contre POLQ, aboutissant à l'extinction de la protéine et donc du signal généré par ces anticorps (Figure 1-B). Un résultat identique est obtenu lorsque les anticorps anti-Pol Thêta purifiés sont utilisés en western blot à la dilution de 0.1pg/ml. Matériel & Méthodes La lignée cellulaire MRC5-SV a été stablement transfectée soit par un vecteur vide (pcDNA3.1, CtrI2) soit par un vecteur codant pour l'ADN polymérase Thêta (pcDNA3.1-POLQ, Q14). Les cellules CtrI2 et Q14, après trypsinisation et lavages au PBS, ont été incubées dans la glace durant 30 min dans le tampon de lyse (Tris-HCI: 50mM, pH 7.5, NaCI: 250mM, EDTA: 1mM, Triton X100: 0.1%, inhibiteurs de protéases). Après centrifugation à 13 000 rpm pendant 20 min, le surnageant est prélevé, dosé et conservé dans du Leammli. 40 pg de protéines ont été déposés sur gel gradient Tris Acétate 3-8% (Nupage Novex Invitrogen) ou sur gel 6% acrylamide. Après migration à 150V pendant 1h15, les protéines ont été transférées sur une membrane de PVDF dans du tampon froid contenant du CAPS (Sigma) 10mM à pH 11, de l'éthanol 10% et du SDS 0.01%, pendant 2h à 200mA sous agitation. Les sites non spécifiques de la membrane ont été ensuite saturés pendant 1h dans du tampon PBS-Tween 0.1% (PBS-T 0.1%), 5% lait écrémé. La membrane est ensuite incubée durant une nuit à 4°C dans du PBS-T 0.1% avec les différents anticorps : anticorps anti-Pol Thêta 1B1, 10B2, 18E1 ou 15G9 (surnageants des hybridomes dilués au 10ème). Après 3 lavages de 10 min au PBS-T 0.1%, les membranes ont été incubées avec l'anticorps secondaire anti-souris couplé HRP au 10 000ème (Jackson lmmunoresearch), dans du PBS-T 0.1% pendant 1h à température ambiante. Apres 3 nouveaux lavages de 10 min au PBS-T 0.1%, la révélation est effectuée avec de l'ECL- plus (Pierce). Afin de s'assurer de la spécificité du signal généré par les anticorps anti-Pol Thêta 1B1 et 10B2, les cellules surexprimant de façon stable la protéine Pol Thêta ectopique (Q14) ont été transfectées par des siRNA ciblant soit la luciférase (siRNA LUC, Sigma) soit spécifiquement l'ADN polymérase Thêta (siRNA POLQ, on Target plus smart pool Dharmacon L-015180-01) à 60nM avec la lipofectamine 2000 (Invitrogen) suivant les instructions du fournisseur. 24h après la transfection, les cellules ont été récupérées par trypsinisation, lavées dans du PBS puis lysées dans le tampon de lyse. Les extraits cellulaires ont été traités comme précédemment décrit. Exemple 3 : immunodétection par western blot de l'ADN polymérase Thêta endogène dans des cellules tumorales colorectales RKO. Légende de la figure 2 Figure 2 : Révélation par western blot de l'ADN polymérase Thêta endogène sous sa forme pleine taille (290 kDa) grâce à l'utilisation des anticorps anti-Pol Thêta 1B1 et 10B2 dans des cellules de cancer colorectal (RKO), 24h après transfection par un siRNA contrôle dirigé contre la luciférase (siRNA LUC) ou un siRNA dirigé spécifiquement contre POLQ (siRNA POLQ). Résultats L'utilisation des surnageants d'hybridomes contenant l'anticorps anti-Pol Thêta 1B1 ou 10B2 permet la détection de l'ADN polymérase Thêta endogène sous sa forme pleine taille (290kDa) dans les cellules RKO. Le signal généré par les anticorps anti- Pol Thêta 1B1 ou 10B2 est éteint après extinction de la protéine Pol Thêta suite à la transfection par le siRNA POLQ, démontrant ainsi la spécificité des anticorps utilisés pour la détection de l'ADN Pol Thêta (Figure 2). Le western blot DNA-PKcs est utilisé comme témoin de charge protéique. Un résultat identique est obtenu lorsque les anticorps anti-Pol Thêta purifiés sont utilisés en western blot à la dilution de 0.1pg/ml. Matériel & Méthodes La lignée cellulaire RKO a été transfectée par des siRNA ciblant soit la luciférase (siRNA LUC, Sigma-Aldrich), soit l'ADN polymérase Thêta (siRNA POLQ, on Target plus smart pool Dharmacon L-015180-01) à 60nM avec la lipofectamine 2000 (Invitrogen) suivant les instructions du fournisseur. 24h après transfection, les cellules ont été récupérées par trypsinisation, lavées dans du PBS puis incubées 30 min dans le tampon de lyse (Tris-HCI: 50mM, pH 7.5, NaCI : 250mM, EDTA: 1mM, Triton X100: 0.1%, inhibiteurs de protéases) dans la glace. Après centrifugation à 13 000 rpm pendant 20 min à 4°C, le surnageant a été prélevé, dosé et conservé dans du Leammli. 40 pg de protéines ont été déposés sur gel gradient Tris Acétate 3-8% (Nupage Novex Invitrogen) ou sur gel 6% acrylamide. Après migration à 150V pendant 1h15, les protéines ont été transférées sur une membrane de PVDF dans du tampon froid contenant du CAPS (Sigma) 10mM à pH 11, de l'Et0H 10% et du SDS 0.01%, pendant 2h à 200mA sous agitation. Les sites non spécifiques de la membrane ont ensuite été saturés pendant 1h dans du tampon PBS-Tween (PBS-T) 0.1%, 5% lait écrémé. Puis la membrane a été incubée la nuit à 4°C dans du PBS-T 0.1% contenant l'anticorps anti-Pol Thêta 1B1 ou 10B2 (Surnageants d'hybridomes dilués au 10ème) ou l'anticorps anti DNA-PKcs (mouse monoclonal, ab1832, Abcam, contrôle de charge) au 5000ème Après 3 lavages de 10 min au PBS-T 0.1%, les membranes ont été incubées avec l'anticorps secondaire anti-souris couplé HRP au 10 000ème (Jackson lmmunoresearch), dans du PBS-T 0.1% pendant 1h à température ambiante. Après 3 nouveaux lavages de 10 min au PBS-T 0.1%, la révélation a été effectuée avec de l'ECL-plus (Pierce). Exemple 4: Tests des anticorps commerciaux anti-Pol Thêta pour l'immunodétection par western blot de l'ADN Pol Thêta ectopique (dans les cellules Q14) et endogène (dans les cellules RKO) Figure 3 : Utilisation des anticorps anti-Pol Thêta vendus dans le commerce pour la détection par western blot de : (i) Pol Thêta ectopique dans des fibroblastes de poumon MRCS-SV surexprimant (Q14) ou non (CtrI2) Pol Thêta stablement et (ii) Pol Thêta endogène dans des cellules RKO, 24h après transfection par un siRNA contrôle dirigé contre la luciférase (siRNA LUC) ou un siRNA dirigé spécifiquement contre POLQ (siRNA POLQ). Résultats Les anticorps commerciaux en provenance de Sigma (SAB1402530 et 35 AV49203) ou de Santa Cruz (N18 sc-10991 et D15 sc-10992) détectent une bande aspécifique, correspondant environ au poids moléculaire attendu pour Pol thêta dans les cellules Q14 et Ctrl2, qui ne présente pas de variation d'intensité entre les cellules Q14 qui surexpriment Pol Thêta par rapport à celles (Crtl2) qui ne la surexpriment pas (Figure 3). Dans la lignée RKO, ces quatre anticorps détectent aussi des bandes aspécifiques aux alentours de 290 kDa qui ne diminuent pas d'intensité après extinction de la protéine par le siRNA POLQ (Figure 3). L'anticorps Sigma AV49203 révèle aussi une bande de poids moléculaire supérieur à celui attendu pour Pol Thêta dans la lignée RKO (siRNA LUC) qui diminue après siRNA POLQ (Figure 3-D). Cependant la taille de cette bande ne correspond pas au poids moléculaire attendu pour Pol Thêta endogène et cet anticorps ne permet pas non plus la révélation, de manière spécifique, de la protéine Pol Thêta ectopique dans les cellules Q14 qui la surexpriment de façon stable par rapport aux cellules contrôles (Ctrl2) qui ne la surexpriment pas (Figure 3-D). Matériel & Méthodes La lignée cellulaire RKO a été transfectée par des siRNA ciblant soit la luciférase (siRNA LUC, Sigma-Aldrich), soit l'ADN polymérase Thêta (siRNA POLQ, on Target plus smart pool Dharmacon L-015180-01) à 60nM avec la lipofectamine 2000 (Invitrogen) suivant les instructions du fournisseur. 24h après transfection, les cellules ont été récupérées par trypsinisation, lavées dans du PBS puis incubées 30 min dans le tampon de lyse comme précédemment décrit (Exemples 2 et 3). Les extraits cellulaires obtenus ont été traités de la même manière que décrit dans les exemples 2 et 3. Les cellules MRC5-SV stablement transfectées soit par un vecteur vide (pcDNA3.1, Ctrl2) soit par un vecteur codant pour l'ADN polymérase Thêta (pcDNA3.1- POLQ, Q14) ont été récupérées par trypsinisation, lavées dans du PBS puis incubées dans la glace durant 30 min dans le tampon de lyse comme précédemment décrit (Exemples 2 et 3). Les extraits cellulaires obtenus ont été traités de la même manière que décrit dans les exemples 2 et 3. Les membranes obtenues ont ensuite été incubées durant une nuit à 4°C dans du PBS-T 0.1% avec les différents anticorps anti-Pol Thêta vendus dans le commerce: DNA pol Thêta goat polyclonal antibodies N18 sc-10991 et D15 sc-10992 (Santa Cruz) au 200ème, POLQ mouse monoclonal antibody SAB1402530 et POLQ rabbit polyclonal antibody AV49203 (Sigma) au 1000ème (soit 1pg/m1) ou avec l'anticorps anti-Alpha Actinine au 1000ème (MAB1682, Millipore, utilisé comme contrôle de charge). Après 3 lavages de 10 min au PBS-T 0.1%, les membranes ont été incubées avec les anticorps secondaires anti-souris, lapin ou chèvre couplés HRP au 10 000ème (Jackson lmmunoresearch), dans du PBS-T 0.1% pendant 1h à température ambiante. Après 3 nouveaux lavages de 10 min au PBS-T 0.1%, la révélation est effectuée avec de l'ECL- plus (Pierce). Exemple 5 : Immunodétection par immunoflurorescence de l'ADN polymérase Thêta dans les fibroblastes pulmonaires MRC5-SV surexprimant stablement une forme ectopique de Pol Thêta (Q14). Figure 4 : Détection de Pol Thêta par immunofluorescence dans des cellules 10 MRC5-SV surexprimant stablement la protéine Pol Thêta (MRC5-SV-POLQ : Q14) grâce à l'utilisation des anticorps anti-Pol Thêta 1B1, 18E1, 10B2 et 15G9. Résultats On observe un marquage intense ponctiforme présent dans l'ensemble du noyau de certaines cellules (celles surexprimant fortement la protéine Pol Thêta), mis 15 en évidence par les 4 anticorps. Le noyau des cellules est marqué en bleu et le marquage correspondant à Pol Thêta apparaît en vert (Figure 4). Un résultat identique est obtenu lorsque les anticorps anti-Pol Thêta purifiés sont utilisés en immunofluorescence à la dilution de 1 pg/ml. Il est à noter que l'anticorps anti-Pol Thêta 10B2 génère aussi un signal nucléolaire 20 aspécifique. Matériel & Méthodes Les cellules MRC5-SV-POLQ (Q14) surexprimant de façon stable la protéine Pol thêta ont été ensemencées sur des lamelles de verre. 24h après, les cellules ont été fixées par du PBS contenant du paraformaldéhyde 4% et du triton 0.1% durant 15 25 min à température ambiante. Après 3 lavages au PBS, les lamelles ont été saturées pendant une heure dans du PBS, BSA 1%, Triton 0.1%, puis lavées au PBS. Les lamelles ont ensuite été incubées en présence des anticorps anti-Pol Thêta 1B1, 18E1, 15G9 et 10B2 (surnageants des hybridomes dilués au 10ème) dans du PBS-BSA 1% pendant 3h à température ambiante. 3 lavages au PBS ont été effectués puis les 30 lamelles ont été incubées avec l'anticorps secondaire Alexa fluor anti-souris 488 (Alexa Fluor) pendant 1h. Après 3 lavages au PBS, les lamelles ont été montées sur lames à l'aide de milieu de montage Vectashield contenant du Dapi afin de marquer les noyaux. Les cellules ont ensuite été observées au microscope à fluorescence. 35 Exemple 6: Immunodétection par immunohistochimie de l'ADN polymérase Thêta dans les fibroblastes pulmonaires MRC5-SV surexprimant stablement une forme ectopique de Pol Thêta Figure 5 : (A) Détection de l'ADN Pol Thêta par Immunohistochimie avec les anticorps anti-Pol thêta 1B1 (10 pg/ml), 18E1 (2.2 pg/ml), 10B2 (1.8 pg/ml) et 15G9 (6 pg/ml) sur des coupes de fibroblastes de poumon fixés au formol puis inclus en paraffine MRC5-SV (CtrI2) et MRC-SV-POLQ surexprimant de façon stable la protéine Pol Thêta (Q14). (B) La spécificité du signal généré par l'anticorps anti-Pol Thêta 1B1 a été confirmée dans les cellules Q14, 24h après transfection par un siRNA contrôle dirigé contre la luciférase (siRNA LUC) ou un siRNA dirigé spécifiquement contre POLQ (siRNA POLQ). Résultats Le noyau des cellules est marqué en bleu et le marquage correspondant à la protéine Pol Thêta apparaît en brun (figure 5). La figure 5A montre un marquage majoritairement nucléaire (2+) ainsi qu'un marquage cytoplasmique moins intense dans 30% et 10 à 20% des cellules Q14 avec les anticorps 1B1 et 10B2 respectivement, alors que les cellules CtrI2 ne sont pas marquées. En présence de l'anticorps 15G9, 5% de cellules Q14 présentent un marquage nucléaire (1+). En présence de l'anticorps 18E1, 80% des cellules Q14 présentent un marquage cytoplasmique granulaire (1+ à 2+) et 60% des cellules CtrI2 présentent un marquage cytoplasmique (1+). La spécificité de l'anticorps 1B1 pour Pol Thêta a été confirmée dans les cellules Q14 grâce à l'utilisation de siRNA dirigés spécifiquement contre POLQ, aboutissant à une diminution significative du nombre de cellules surexprimant l'ADN Pol Thêta (figure 5B). Matériel & Méthodes Après culture des cellules MRC5-SV CtrI2 et Q14 à 37°C et centrifugation, elles sont fixées au formol et incluses en paraffine selon les procédures en vigueur au laboratoire d'anatomopathologie. Les blocs de tissus sont coupés au microtome à une épaisseur de 3 pm puis étalés sur lames de verre et mis à sécher sur la platine chauffante à 56°C pendant 10 min puis la nuit à l'étuve à 37°C. Les lames blanches sont stockées à 4°C. Les lames sont sorties 30 min à température ambiante. Le déparaffinage et le démasquage des sites antigéniques sont réalisés à pH9 dans l'automate PTLink (Dako) pendant 20 min. Les lames blanches sont ensuite techniquées avec le kit EnVision (Dako) à température ambiante. Entre chaque réactif mis en contact avec la coupe, celle-ci est rincée en présence d'un tampon de lavage à base de Tris pH7,6. Le blocage des peroxydases par le peroxyde d'hydrogène est réalisé pendant 5 min afin d'éliminer le bruit de fond dû à la présence de peroxydases endogènes. La coupe est incubée avec l'anticorps primaire anti- Pol Thêta pendant 20 min. L'anticorps secondaire couplé à l'enzyme HRP est incubé pendant 20 min. La lame blanche est incubée pendant 10 min en présence du substrat chromogène (DAB) puis 3 min en présence du contre colorant Hématoxyline (noyaux bleus). La lame blanche est enfin rincée à l'eau distillée avant déshydratation dans des bains d'alcool de degré croissant puis en bains de xylène. Le montage s'effectue sur un automate Tissue Tek Sakura. La lecture de la coloration et la détermination de l'intensité de cette coloration et du pourcentage de cellules tumorales positives est réalisée par un médecin anatomopathologiste. Les lames sont scannées et numérisées avec le scanner de lame Nanozoomer (Hamatsu). Les photos sont obtenues par sélection, grâce au logiciel ScreenHunter, de la partie d'intérêt de la lame numérisée à un grossissement 400x dans le logiciel NDP View. Afin de s'assurer de la spécificité du signal généré par les anticorps anti-Pol Thêta 1B1, les cellules Ctrl2 et Q14 ont été transfectées par des siRNA ciblant soit la luciférase (siRNA LUC, Sigma) soit spécifiquement l'ADN polymérase Thêta (siRNA POLO, on Target plus smart pool Dharmacon L-015180-01) à 60 nM avec la lipofectamine 2000 (Invitrogen) suivant les instructions du fournisseur. Les immunodétections de la figure 5B ont été réalisées dans les mêmes conditions que précédemment excepté l'utilisation supplémentaire du Mouse Linker (Dako) qui permet une amplification du signal des anticorps primaires. Le grossissement 200x a été retenu pour la visualisation de la quantité de cellules surexprimant Pol Thêta. Exemple 7 : Immunoprécipitation de l'ADN polymérase Pol Thêta par les anticorps 18E1, 10B2, 15G9 et 1B1. Figure 6 : (A) Détection de Pol Thêta après immunoprécipitation réalisée par les anticorps 18E1, 10B2, 1B1 ou 15G9. (B) Détection de Pol Thêta dans la fraction initiale (FI) et après immunoprécipitation (IP) réalisée par les anticorps 18E1 ou 1B1 ou par les immunoglobulines contrôles IgG1 et IgG2a. (C) Détection de Pol Thêta dans la fraction initiale (FI) et après immunoprécipitation (IP) réalisée par les anticorps 18E1 ou 1B1 dans les cellules RKO, 24h après transfection par un siRNA contrôle ou dirigé contre POLQ.Résultats L'immunoprécipitation réalisée à l'aide des anticorps 18E1, 10B2, 1B1 et 15G9 dans les cellules humains RKO, permet de retrouver la présence de la protéine Pol Thêta pleine taille dans l'immunoprécipitat (IP) révélé par western blot (Figure 6A), et ce de façon enrichi par rapport à la fraction de départ (FI, avant immunoprécipitation) (Figure 6B). Par ailleurs, l'utilisation d'immunoglobulines contrôles de type IgG1 et IgG2a ne permet pas l'immunoprécipitation de Pol Thêta (absence de signal), démontrant la spécificité des anticorps 18E1 et 1B1 pour Pol Thêta (Figure 6B). La spécificité des anticorps 18E1 et 1B1 a encore été renforcée par une expérience d'immunoprécipitation réalisée après extinction de l'expression de la protéine Pol Thêta par stransfection des cellules RKO par un siRNA contrôle (CTRL) ou dirigé contre POLQ. En effet, l'intensité du signal correspondant à Pol Thêta dans la fraction initiale (FI) et dans l'immunoprécipitat (IP) est très significativement diminuée après extinction de la protéine par transfection avec le siRNA POLQ par rapport au siRNA CTRL (Figure 6C). Matériel & Méthodes 20X106 de cellules humaines RKO ont été lysées dans 1 ml de tampon d'IP (Tris 50mM pH8, NaCI 150mM, EGTA 3mM, NP40 1%, inhibiteurs de proteases et phosphatases) et conservées dans la glace pendant 30 min. Après centrifugation à 13 000rpm pendant 10 min à 4°C, the surnageant a été incubé avec 40p1 protein A et G dynabeads (Invitrogen) pendant 1 h à 4°C sur roue. Après enlèvement des billes, 5pg d'anticorps 18E1, 15G9, 10B2 ou 1B1 ont été incubés avec les surnageants à 4°C sur roue pendant 2h30. 40p1 de proteines A et G dynabeads (Invitrogen) ont été ensuite rajoutés pendant 2 heures supplémentaires. Après 3 lavages avec le tampon d'IP, le matériel immunoprecipité a été resuspendu dans 60p1 de Laemmli, bouilli pendant 3 min and analysé en western blot. La révélation de Pol Thêta en western blot a été effectuée grâce à l'utilisation de l'anticorps 1B1 (0.1pg/m1) comme décrit précédemment. REVENDICATIONS1. Anticorps monoclonal capable de se lier au domaine central de l'ADN polymérase Pol Thêta. 2. Anticorps selon la revendication 1 caractérisé en ce qu'il est sélectionné dans le groupe comprenant les anticorps suivants : i. anticorps capable de se lier à la séquence amino acide ayant la SEQ 1 du domaine central de l'ADN polymérase Pol Thêta, ii. anticorps capable de se lier à la séquence amino acide ayant la SEQ 2 du domaine central de l'ADN polymérase Pol Thêta, iii. anticorps capable de se lier à la séquence amino acide ayant la SEQ 4 du domaine central de l'ADN polymérase Pol Thêta. 3. Anticorps selon la revendication 1 caractérisé en ce qu'il est sélectionné dans le groupe comprenant les 4 anticorps suivants : i. anticorps capable de se lier à la séquence amino acide ayant la SEQ 1 du domaine central l'ADN polymérase Pol Thêta caractérisé en ce que ledit anticorps comprend les 6 CDR comprenant les séquences amino acide respectives suivantes : SEQ ID 21, SEQ ID 22, SEQ ID 23, SEQ ID 24, SEQ ID 25, SEQ ID 26 ii. anticorps capable de se lier à la séquence amino acide ayant la SEQ 2 du domaine central l'ADN polymérase Pol Thêta caractérisé en ce que ledit anticorps comprend les 6 CDRs comprenant les séquences amino acide respectives suivantes : SEQ ID 5, SEQ ID 6, SEQ ID 7, SEQ ID 8, SEQ ID 9, SEQ ID 10. iii. anticorps capable de se lier à la séquence amino acide ayant la SEQ 4 du domaine central l'ADN polymérase Pol Thêta caractérisé en ce que ledit anticorps comprend les 6 CDRs comprenant les séquences amino acide respectives suivantes : SEQ ID 13, SEQ ID 14, SEQ ID 15, SEQ ID 16, SEQ ID 17, SEQ ID 18 iv. anticorps capable de se lier à la séquence amino acide ayant la SEQ 4 du domaine central l'ADN polymérase Pol Thêta caractérisé en ce que ledit anticorps comprend les 6 CDR comprenant les séquences amino acide respectives suivantes : SEQ ID 29, SEQ ID 30, SEQ ID 31, SEQ ID 32, SEQ ID33, SEQ ID 34.35 4. Anticorps selon la revendication 2 ou 3, caractérisé en ce que : i. L'anticorps capable de se lier à la séquence amino acide ayant la SEQ 1 du domaine central l'ADN polymérase Pol Thêta comprend : i. Une chaîne lourde comprenant les 3 CDRs : CDR3H1, CDR3H2 et CDR3H3 ayant les séquences respectives suivantes SEQ ID 21, SEQ ID 22 et SEQ ID 23, ii. Une chaîne légère comprenant les 3 CDRs : CDR3L1, CDR3L2 et CDR3L3 ayant les séquences respectives suivantes SEQ ID 24, SEQ ID 25 et SEQ ID 26. ii. l'anticorps capable de se lier à la séquence amino acide ayant la SEQ 2 du domaine central l'ADN polymérase Pol Thêta comprend : i. Une chaîne lourde comprenant les 3 CDRs : CDR1H1, CDR1H2 et CDR1H3 ayant les séquences respectives suivantes SEQ ID 5, SEQ ID 6 et SEQ ID 7, ii. Une chaîne légère comprenant les 3 CDRs : CDR1L1, CDR1L2 et CDR1L3 ayant les séquences respectives suivantes SEQ ID 8., SEQ ID 9 et SEQ ID 10. iii. l'anticorps capable de se lier à la séquence amino acide ayant la SEQ 4 du domaine central l'ADN polymérase Pol Thêta comprend : i. Une chaîne lourde comprenant les 3 CDRs : CDR2H1, CDR2H2 et CDR2H3 ayant les séquences respectives suivantes SEQ ID 13, SEQ ID 14 et SEQ ID 15 ii. Une chaîne légère comprenant les 3 CDRs : CDR2L1, CDR2L2 et CDR2L3 ayant les séquences respectives suivantes SEQ ID 16, SEQ ID 17 et SEQ ID 18. iv. l'anticorps capable de se lier à la séquence amino acide ayant la SEQ 4 du domaine central l'ADN polymérase Pol Thêta comprend : i. une chaîne lourde comprenant les 3 CDRs : CDR4H1, CDR4H2 et CDR4H3 ayant les séquences respectives suivantes SEQ ID 29, SEQ ID 30 et SEQ ID 31, ii. une chaîne légère comprenant les 3 CDRs : CDR4L1, CDR4L2 et CDR4L3 ayant les séquences respectives suivantes SEQ ID 32, SEQ ID 33 et SEQ ID 34.35 5. Anticorps selon la revendication 2 ou 3 caractérisé en ce que : i. l'anticorps capable de se lier à la fraction peptidique ayant la SEQ 1 du domaine central de l'ADN polymérase Pol Thêta comprenant : i. une chaîne lourde comprenant les 3 CDRs : CDR3H1, CDR3H2 et CDR3H3 ayant les séquences respectives suivantes SEQ ID 21, SEQ ID 22 et SEQ ID 23, ii. un domaine variable de chaîne légère comprenant la SEQ ID 28 ii. l'anticorps capable de se lier à la fraction peptidique ayant la SEQ 2 du domaine central l'ADN polymérase Pol Thêta comprend : i. une chaîne lourde comprenant les 3 CDRs : CDR1H1, CDR1H2 et CDR1H3 ayant les séquences respectives suivantes SEQ ID 5, SEQ ID 6 et SEQ ID 7, ii. un domaine variable de chaîne légère comprenant la SEQ ID 12. iii. l'anticorps capable de se lier à la fraction peptidique ayant la SEQ 4 du domaine central l'ADN polymérase Pol Thêta comprenant : i. une chaîne lourde comprenant les 3 CDRs : CDR2H1, CDR2H2 et CDR2H3 ayant les séquences respectives suivantes SEQ ID 13, SEQ ID 14 et SEQ ID 15, ii. un domaine variable de chaîne légère comprenant la SEQ ID 20. iv. l'anticorps capable de se lier à la fraction peptidique ayant la SEQ 4 du domaine central l'ADN polymérase Pol Thêta comprenant : i. une chaîne lourde comprenant les 3 CDRs : CDR4H1, CDR4H2 et CDR4H3 ayant les séquences respectives suivantes SEQ ID 29 SEQ ID 30 et SEQ ID 31, ii. un domaine variable de chaîne légère comprenant la SEQ ID36. 6. Anticorps selon la revendication 2 ou 3 caractérisé en ce que: i. l'anticorps capable de se lier à la fraction peptidique ayant la SEQ 1 du domaine central de l'ADN polymérase Pol Thêta comprend : i. une chaîne légère comprenant les 3 CDRs : CDR3L1, CDR3L2 et CDR3L3 ayant les séquences respectives suivantes SEQ ID 24, SEQ ID 25 et SEQ ID 26, ii. un domaine variable de chaîne lourde comprenant la SEQ ID 27, ii. l'anticorps capable de se lier à la fraction peptidique ayant la SEQ 2 du domaine central l'ADN polymérase Pol Thêta comprend :i. une chaîne légère comprenant les 3 CDRs : CDR1L1, CDR1L2 et CDR1L3 ayant les séquences respectives suivantes SEQ ID 8, SEQ ID 9 et SEQ ID 10, ii. Un domaine variable de chaîne lourde comprenant la SEQ ID 11, iii. l'anticorps capable de se lier à la fraction peptidique ayant la SEQ 4 du domaine central l'ADN polymérase Pol Thêta comprend : i. une chaîne légère comprenant les 3 CDRs : CDR2L1, CDR2L2 et CDR2L3 ayant les séquences respectives suivantes SEQ ID 16, SEQ ID 17 et SEQ ID 18 ii. un domaine variable de chaîne lourde comprenant la SEQ ID19, iv. l'anticorps capable de se lier à la fraction peptidique ayant la SEQ 4 du domaine central l'ADN polymérase Pol Thêta comprend : i. une chaîne légère comprenant les 3 CDRs : CDR4L1, CDR4L2 et CDR4L3 ayant les séquences respectives suivantes SEQ ID 32, SEQ ID 33 et SEQ ID 34, ii. un domaine variable de chaîne lourde comprenant la SEQ ID35. 7 Anticorps selon la revendication 2 ou 3 caractérisé en ce que: i. l'anticorps capable de se lier à la fraction peptidique ayant la SEQ 1 du domaine central de l'ADN polymérase Pol Thêta comprend : i. un domaine variable de la chaîne lourde comprenant la SEQ ID27, ii. un domaine variable de chaîne légère comprenant la SEQ ID 28, ii. l'anticorps capable de se lier à la fraction peptidique ayant la SEQ 2 du domaine central l'ADN polymérase Pol Thêta comprend : i. un domaine variable de la chaîne lourde comprenant la SEQ ID11 ii. un domaine variable de la chaîne légère comprenant la SEQ ID12 iii. l'anticorps capable de se lier à la fraction peptidique ayant la SEQ 4 du domaine central l'ADN polymérase Pol Thêta comprend : i. un domaine variable de la chaîne lourde comprenant la SEQ ID19 ii. un domaine variable de la chaîne légère comprenant la SEQ ID20iv. L'anticorps capable de se lier à la fraction peptidique ayant la SEQ 4 du domaine central l'ADN polymérase thêta comprend : i. un domaine variable de la chaîne lourde comprenant la SEQ 1D35 ii. un domaine variable de la chaîne légère comprenant la SEQ 1D36 8. Anticorps 1B1 selon la revendication 1 comprenant : i. une chaîne lourde comprenant la séquence SEQ ID 39 ii. une chaîne légère comprenant la séquence SEQ ID 40 9. Anticorps 18E1 selon la revendication 1 comprenant : i. une chaîne lourde comprenant SEQ ID 41 ii. une chaîne légère comprenant SEQ ID 42 10. Anticorps 10B2 selon la revendication 1 comprenant : i. une chaîne lourde comprenant SEQ ID 37 ii. une chaîne légère comprenant SEQ ID 38 11. Anticorps 15G9 selon la revendication 1 comprenant : i. une chaîne lourde comprenant SEQ ID 43 ii. une chaîne légère comprenant SEQ ID 44 12. Anticorps monoclonal 1B1, ou ses dérivés ou fragments fonctionnels, caractérisé en ce qu'il est sécrété par l'hybridome1B1-3D4-2C5, CNCM 1-4824. 13. Anticorps monoclonal 18E1, ou ses dérivés ou fragments fonctionnels, caractérisé en ce qu'il est sécrété par l'hybridome 18E1-3E12, CNCM 1-4827. 14. Anticorps monoclonal 10B2, ou ses dérivés ou fragments fonctionnels, caractérisé en ce qu'il est sécrété par l'hybridome 10B2-3B10-3D1, CNCM 1-4825. 15. Anticorps monoclonal 15G9, ou ses dérivés ou fragments fonctionnels, est caractérisé en ce qu'il est sécrété par l'hybridome 15G9-3D5, CNCM 1-4826. 16. Anticorps selon l'une des revendications précédentes pour son utilisation pour le diagnostic in vitro ou ex vivo d'un désordre associé à l'expression de l'ADN polymérase Pol Thêta. 17. Anticorps selon la revendication 16 caractérisé en ce que le désordre associé à l'expression de l'ADN polymérase Pol Thêta est le cancer. 18. Anticorps selon la revendication 16 caractérisé en ce que le diagnostic est réalisé par immunohistochimie ou par immunofluorescence.35 19. Acide nucléique sélectionné parmi : i. ADN ou ARN codant pour un anticorps, ou un fragment fonctionnel, selon l'une des revendications précédentes, ii. Séquence d'ADN comprenant SEQ ID 45, SEQ ID 46, SEQ ID 47, SEQ ID 48, SEQ 49, SEQ ID 50, SEQ ID 51, SEQ ID 52, SEQ ID 53, SEQ ID 54, SEQ ID 55, SEQ ID 56, SEQ ID 57, SEQ ID 58, SEQ ID 59, SEQ ID 60, SEQ ID 61, SEQ ID 62, SEQ ID 63, SEQ ID 64, SEQ ID 65, SEQ ID 66, SEQ ID 67, SEQ ID 68, SEQ ID 69, SEQ ID 70, SEQ ID 71, SEQ ID 72, SEQ ID 73, SEQ ID 74, SEQ ID 75, SEQ ID 76, iii. Séquence d'ARN transcrite à partir d'une séquence d'ADN ci-dessus. 20. Vecteur comprenant un acide nucléique selon la revendication 19. 21. Méthode pour déterminer in vitro ou ex vivo la présence d'une tumeur surexprimant l'ADN polymérase Pol Thêta chez un sujet comprenant les étapes suivantes : i. mettre en contact un échantillon biologique obtenu du sujet avec un anticorps selon l'une des revendications 1 à 15, ii. détecter la liaison de l'anticorps avec l'ADN polymérase Pol Thêta au sein de l'échantillon. 22. Méthode pour déterminer in vitro ou ex vivo le niveau d'expression de l'ADN polymérase Pol Thêta chez un sujet comprenant les étapes suivantes : i. mettre en contact un échantillon biologique obtenu du sujet avec un anticorps selon l'une des revendications 1 à 15 ii. quantifier le niveau d'expression de l'ADN polymérase Pol Thêta au sein de l'échantillon. 23. Méthode pour évaluer in vitro ou ex vivo la gravité ou l'agressivité d'une tumeur ou d'un cancer chez un sujet comprenant les étapes suivantes : i. mettre en contact un échantillon biologique de tumeur obtenu du sujet avec un anticorps selon l'une des revendications 1 à 15, ii. quantifier le niveau d'expression de l'ADN polymérase Pol Thêta au sein de l'échantillon, iii. évaluer la tumeur ou le cancer par comparaison du niveau d'expression de l'ADN polymérase Pol Thêta à une échelle. 24. Méthode d'évaluation du risque de développement ou de progression d'un cancer chez un sujet, comprenant les étapes :a. mettre en contact un anticorps selon l'une des revendications 1 à 15 avec un échantillon cancéreux obtenu du sujet b. quantifier le niveau d'expression de l'ADN polymérase Pol Thêta dans l'échantillon testé c. quantifier le niveau d'expression de l'ADN polymérase Pol Thêta dans un échantillon équivalent du même sujet à un moment plus tardif d. mesurer le ratio entre le niveau d'expression obtenu à l'étape b et le niveau obtenu à l'étape c, dans laquelle le ratio fourni une information sur le risque de développement ou de progression du cancer. 25. Méthode pour déterminer l'éligibilité d'un sujet atteint d'un cancer à une chimiothérapie adjuvante comprenant les étapes suivantes : i. mettre en contact un échantillon biologique de tumeur obtenu du sujet avec un anticorps selon l'une des revendications 1 à 15, ii. détecter la liaison de l'anticorps avec l'échantillon iii. quantifier le niveau d'expression de l'ADN polymérase Pol Thêta au sein de l'échantillon, iv. comparer le niveau d'expression obtenu en iii) avec le niveau d'expression au sein d'un échantillon témoin. 26. Méthode pour le diagnostic de l'instabilité d'un cancer chez un sujet à partir d'un échantillon cancéreux d'un tel sujet comprenant : a. mettre en contact un anticorps selon l'une des revendications 1 à 15 avec un échantillon cancéreux obtenu du sujet b. quantifier le niveau d'expression de l'ADN polymérase Pol Thêta dans l'échantillon testé c. quantifier le niveau d'expression de l'ADN polymérase Pol Thêta dans un échantillon sain du même sujet d. mesurer le ratio entre le niveau d'expression obtenu à l'étape b et le niveau obtenu à l'étape c, dans laquelle le ratio fourni une information sur l'instabilité génétique du cancer. 27. Méthode selon l'une des revendications 21 à 26 dans laquelle la détection de la liaison de l'anticorps ou la quantification du niveau d'expression de l'ADN polymérase Pol Thêta au sein de l'échantillon est réalisé par immunohistochimie.28. Méthode selon l'une des revendications 21 à 26, dans laquelle la quantification du niveau de liaison de l'anticorps à l'ADN polymérase Pol Thêta et/ou la mesure du niveau d'expression de l'ADN polymérase Pol Thêta sont réalisées selon une échelle appropriée, telle que l'échelle ALLRED. 29. Méthode selon la revendication 28 dans laquelle l'échelle appropriée est basée sur deux paramètres qui sont l'intensité de la coloration et le pourcentage de cellules positives. 30. Méthode selon la revendication 28 dans laquelle l'échelle appropriée est une échelle de 0 à 8 dans laquelle « sans réactivité » est évalué au niveau 0, et une forte réactivité dans une proportion de « 67 à 100% réactif » est évalué au niveau 8. 31. Méthode selon l'une des revendications 21 à 30, caractérisée en ce que la détection de la liaison de l'anticorps se fait à l'aide d'une technique choisie parmi l'immunohistochimie ou l'immunofluorescence. 32. Kit comprenant au moins un anticorps selon l'une des revendications 1 à 15. 33. Kit selon la revendication 32, caractérisé en ce que l'anticorps est marqué. 34. Kit selon l'une des revendications 32 ou 33 caractérisé en ce qu'il comprend en outre un réactif pour détecter la liaison de l'anticorps avec l'ADN polymérase Pol Thêta . 35. Kit selon l'une des revendications 32 à 34 caractérisé en ce qu'il comprend un réactif pour quantifier le niveau de liaison de l'anticorps avec l'ADN polymérase Pol Thêta. 36. Hybridome 1B1-3D4-2C5 déposé sous le numéro CNCM 1-4824, le 3 décembre 2013. 37. Hybridome18E1-3E12 déposé sous le numéro CNCM 1-4827, le 3 décembre 2013. 38. Hybridome 10B2-3B10-3D1 déposé sous le numéro CNCM 1-4825, le 3 décembre 2013. 39. Hybridome 15G9-3D5 déposé sous le numéro CNCM 1-4826, le 3 décembre 2013. 30