Brevet FR3003872A1 — publié le 20141003

PROCEDE DE STABILISATION DES METABOLITES SENSIBLES A L'OXYDATION PRODUITS PAR LES MICROALGUES DU GENRE CHLORELLA La présente invention est relative à un procédé de stabilisation des métabolites sensibles à l'oxydation produits par des microalgues, plus particulièrement du genre Chlorelle. Parmi les métabolites sensibles à l'oxydation les plus connus, on trouve par exemple les caroténoïdes. Les caroténoïdes sont des pigments plutôt oranges et jaunes répandus chez de 10 très nombreux organismes vivants. Liposolubles, ils sont en général facilement assimilables par les organismes. Ils appartiennent à la famille chimique des terpénoïdes, formés à partir de la polymérisation d'unités isoprènes à structure aliphatique ou alicyclique. Il est généralement admis qu'ils suivent des voies métaboliques similaires à celles des lipides. 15 Ils sont synthétisés par toutes les plantes vertes et par de nombreux champignons, bactéries (dont les cyanobactéries) et par toutes les microalgues. Ils sont absorbés par les animaux dans leur nourriture. Les caroténoïdes ont été étudiés pour la prévention du cancer et d'autres maladies humaines, car ils présentent des propriétés antioxydantes remarquables. 20 Ce sont d'ailleurs leurs propriétés antioxydantes qui rendent les caroténoïdes particulièrement sensibles à l'oxydation, car il est bien connu de l'homme du métier qu'une substance antioxydante doit être elle-même facilement oxydable pour jouer ce rôle. Des exemples représentatifs de caroténoïdes comprennent l'a-carotène, le Il-carotène et le lycopène. 25 Le fl-carotène et le lycopène sont généralement présents sous une forme non combinée libre, qui est emprisonnée au sein des chloroplastes des cellules végétales. Les xanthophylles sont des molécules de couleur jaune dérivées des carotènes par ajout d'atomes d'oxygène (fonctions alcool, cétone, époxy, ...). Elles font partie de la famille de caroténoïdes. 30 Les xanthophylles sont abondantes dans un certain nombre de fruits jaunes ou oranges et légumes tels que les pêches, les mangues, la papaye, les pruneaux, les courges et les oranges. On les rencontre également dans les chloroplastes ou les chromoplastes des cellules végétales, notamment dans les pétales de certaines fleurs de couleur jaune, 35 orange ou rouge, et chez les algues, par exemple les algues brunes (Phéophycées), où elles masquent la chlorophylle. Les xanthophylles sont des antioxydants qui contribuent entre autres à la santé des yeux. Des exemples de xanthophylles comprennent la lutéine, l'astaxanthine, la canthaxanthine, la zéaxanthine, la cryptoxanthine... La forme libre des caroténoïdes permet une meilleure absorption lorsqu'ils sont consommés dans les aliments ou comme complément alimentaire. La lutéine est un pigment xanthophylle de formule 4[18-(4-hydroxy-2,6,6- triméthylcyclohex-1-én-l-y1)-3,7,12,16-tetraméthyloctadéca-1,3,5,7,9,11, 13, 15, 17-nonaén1-y1]-3,5,5-triméthylcyclohex-2-én-l-ol trouvé en concentrations élevées dans la macula de l'oail et dans la partie centrale de la rétine. Elle y joue un rôle important dans la filtration des longueurs d'onde ultraviolettes de la lumière afin d'éviter d'endommager la lentille de l'oail et la macula. La lutéine a par ailleurs des propriétés antioxydantes qui permettent également de protéger la macula, qui est riche en acides gras polyinsaturés, des radicaux libres induits par la lumière. La lutéine ne peut pas être produite par le corps et, par conséquent, doit être apportée par l'alimentation. Ainsi, la lutéine est devenue de plus en plus utilisée dans les compléments nutritionnels pour la prévention et / ou le traitement des pertes de vision dues à la dégénérescence maculaire liée à l'âge (ou DMLA), les cataractes, et la rétinite pigmentaire. Les microalgues de type Muriellopsis sp., Scenedesmus almeriensis, Chlorella zofingiensis, Chlorella sorokiniana et Chlorella protothecoides ont déjà été proposées comme des sources potentielles de lutéine. Du point de vue réglementaire, la lutéine est obtenue par extraction au solvant de souches de fruits et de végétaux comestibles ainsi que des herbes, de la luzerne et de Tagetes erecta. Différentes quantités de carotènes peuvent également être présentes. La lutéine peut contenir des matières grasses et cires naturellement présentes dans le matériel végétal d'origine. Seuls les solvants suivants sont autorisés pour leur extraction: méthanol, éthanol, propanol-2, hexane, acétone, méthyléthylcétone et anhydride carbonique. Certaines préparations commerciales de lutéine sont vendues comme ayant « 5 % ou 10 % de lutéine ». Ces préparations sont en fait de la lutéine purifiée (estérifiée ou libre) ajoutée à un agent stabilisant inerte dans une proportion de 5 à 15% pour assurer sa stabilisation. Sensible à la lumière et à l'oxydation, elle doit donc être stockée dans un contenant hermétiquement fermé, résistant à la lumière et à l'oxygène, dans un endroit frais et sec. Et malgré ces précautions, la stabilité de ces composés n'est pas totalement assurée. Ces conditions de stockage et de manipulation ne sont en outre guère aisées. La lutéine se rencontrant en forte proportion dans certaines microalgues comme Chlorelle, il est donc préféré de choisir cette source microbienne afin de développer des procédés de production permettant d'obtenir de plus grandes quantités de lutéine de façon rentable et compenser la perte inhérente à la fragilité de telles molécules. Par ailleurs, les microalgues du genre Chlorelle renferment une gamme unique de composants qui comprend, outre les caroténoïdes précités, tous les acides aminés essentiels, des acides gras saturés et insaturés, une grande quantité de vitamines, minéraux et oligo-éléments, ainsi que des composants précieux, dont la chlorophylle, en forte concentration. Les microalgues sont également une source de nourriture potentielle attrayante riche en protéines et autres nutriments essentiels ; une fois sèches, elles représentent classiquement un apport d'environ 45 % de protéines, 20 % de matières grasses, 20 % de glucides, 5 % de fibres et 10 % de minéraux et vitamines. Cependant, au même titre que les caroténoïdes, les acides gras insaturés présentent une sensibilité d'autant plus élevée à l'oxydation que leur degré d'insaturation est élevé ; l'acide linoléique polyinsaturé est ainsi plus sensible à l'oxydation que les acides monoinsaturés de type oléique et palmitoléique. Il en est de même pour les pigments chlorophylliens, dont la sensibilité à la photo-oxydation est bien connue de l'Homme du métier. Il est ainsi connu que les sels solubles de la chlorophylle ont une activité antioxydante plus de 1000 fois supérieure à celle des xanthines, et 20 fois supérieure à celle du resvératrol (polyphénol de la classe des stilbènes présent dans certains fruits comme les raisins, les mûres...). Les suppléments de chlorophylle se retrouvent ainsi dans le commerce sous forme liquide, en comprimés ou en capsules. La chlorophylle est souvent incluse dans les formules d'aliments verts en poudre. Quant aux vitamines, les vitamines B (vitamine B9 ou vitamine B12, par exemple), hydrosolubles, elles sont naturellement fragiles (sensibilité à la lumière, à la chaleur et à l'oxydation). L'importance des vitamines A, C et E comme antioxydants dans la biochimie des organismes vivants est également bien documentée. Pour augmenter la résistance de tous ces éléments nutritifs, il est donc nécessaire de les protéger des « agressions extérieures », i.e. lumière et oxygène. Or les voies classiques de préparation de ces composés passent par leur extraction / purification de leur milieu biologique de base, puis leur cloisonnement dans des récipients hermétiques. Des additifs antioxydants et des conditions de stockage sous atmosphère inerte sont donc préconisés. Mais, outre le fait que ces technologies sont complexes et couteuses à mettre en oeuvre, elles ne sont pas très efficaces ni totalement satisfaisante au point de vue nutritionnel et santé. Une solution technique alternative a été présentée, notamment dans le brevet US 2005/0186298, consistant à stabiliser des caroténoïdes dans la biomasse des microalgues qui les produisent. Il s'agit plus particulièrement ici de stabiliser la biomasse de Haemotococcus pluvialis productrice d'astaxanthine. Cependant, cette solution technique recommande : - de produire la biomasse sèche (classiquement réalisée en conditions phototrophiques - croissance en présence de lumière et de CO2 - mais pouvant être produite également en hétérotrophie - fermentation à l'obscurité en présence d'une source carbonée assimilable), et ensuite - de combiner cette biomasse avec un mélange d'au minimum deux antioxydants de type tocophérols. Par conséquent, le problème sous-jacent de la présente invention est de proposer un procédé alternatif de stabilisation des métabolites sensibles à l'oxydation, et plus particulièrement ceux produits par des microalgues, notamment celles du genre Chlorelle, par un procédé simple, sans qu'il ne soit utile d'ajouter des substances chimiques de type antioxydants ou stabilisants. Soucieuse de mettre au point un procédé plus efficace que ceux connus de l'état de l'art, la société Demanderesse a développé ses propres recherches et a réussi à adapter les technologies de production des microalgues en hétérotrophie pour parvenir à cette fin. La culture des chlorophytes, et plus particulièrement de Chlorelle, par voie hétérotrophique est connue de manière générale pour la préparation de biomasses riches en métabolites d'intérêt, dont la lutéine. Il est ainsi admis depuis les années 1960 qu'il est même possible d'obtenir des rendements en pigments beaucoup plus importants qu'avec les mêmes microalgues cultivées plus classiquement en conditions auxotrophiques éclairées. Le choix de cette voie de production hétérotrophique, comme énoncé ci-avant, a surtout pour objectif de produire les teneurs en lutéine les plus hautes possibles, permettant ainsi de compenser leur perte par dégradation oxydative. Wu et al, dans leur article de 2007 publié dans la revue World J. Microbiol. Biotechnol., volume 23, pp 1233 - 1238, ont ainsi modélisé la production de lutéine par culture fermentaire hétérotrophique en mode discontinu (type « batch ») et semi continu (type « fed-batch ») afin d'optimiser la production de lutéine. Cependant, aucun des documents de l'état de l'art, à la connaissance de la société Demanderesse, ne décrit ni ne suggère d'utiliser la biomasse elle-même, produite en conditions hétérotrophiques, comme vecteur de stabilisation des métabolites d'intérêt. Bien au contraire, il est recommandé d'ajouter des antioxydants pour parvenir à ce résultat. La présente invention est donc relative à un procédé de stabilisation de métabolites sensibles à l'oxydation choisis dans le groupe constitué des caroténoïdes comme la lutéine, des acides gras monoinsaturés et polyinsaturés comme l'acide palmitoléique, l'acide oléique ou l'acide linoléique, des pigments chlorophylliens comme la chlorophylle A et B, et des vitamines comme les vitamines B9 et B12, pris seuls ou en combinaison, plus particulièrement des caroténoïdes, le dit procédé comprenant : - la fermentation d'une biomasse de microalgues en conditions hétérotrophiques comprenant une phase de culture carencée en un facteur nutritif ; et - le stockage de la biomasse sèche au sein de laquelle les métabolites sensibles à l'oxydation sont stabilisés. Par « stabilisation des métabolites », on entend garantir la qualité des métabolites d'intérêt après stockage pendant une période de plus d'un an, ce qui se traduit notamment par une protection des métabolites contre leur dégradation oxydative. Par « métabolites d'intérêt sensibles à l'oxydation » produits par les microalgues du genre Chlorelle, on entend des composés choisis dans le groupe constitué des caroténoïdes incluant la lutéine, des acides gras monoinsaturés et polyinsaturés incluant l'acide palmitoléique, l'acide oléique et l'acide linoléique, des pigments chlorophylliens tels que la chlorophylle A et B, et des vitamines, incluant la vitamine B9 et notamment la vitamine B12, plus particulièrement des caroténoïdes. Par phase de culture « carencée en un facteur nutritif » on entend une phase de culture dans laquelle au moins un des facteurs nutritifs de la microalgue est apportée en quantité insuffisante pour permettre sa croissance. La culture est par exemple réalisée dans des conditions telles que l'un des facteurs nutritifs est apporté dans le milieu à une vitesse inférieure à la vitesse de consommation que la microalgue pourrait réaliser sans limitation. Cela se traduit également par une absence de facteur nutritif résiduel dans le milieu de culture, la microalgue consommant ce facteur nutritif au fur et à mesure de son apport. De préférence, le facteur nutritif est la source carbonée, et plus particulièrement le glucose. La présente invention est ainsi particulièrement adaptée à la stabilisation des métabolites tels les caroténoïdes, dont l'extrême sensibilité à l'oxydation est bien connue de l'homme du métier. Dans le cadre plus particulier de l'invention, la stabilisation des caroténoïdes garantit ainsi également celle des autres métabolites produits par les microalgues, métabolites susceptibles d'être dégradés par oxydation. Plus particulièrement, les métabolites sensibles à l'oxydation sont stockés dans les cellules des microalgues contenues dans la biomasse. Le procédé selon la présente invention rend inutile l'ajout d'antioxydant exogène pour préserver les métabolites sensibles à l'oxydation. Ainsi, de préférence, le procédé ne comprend pas l'ajout d'antioxydant exogène à la dite biomasse sèche. L'invention permet ainsi de mettre à disposition une biomasse naturelle à teneur garantie en métabolites d'intérêt, comme les pigments. La biomasse de microalgues s'entend ici de microalgues, plus particulièrement du genre Chlorelle, tel que Chlorelle sorokiniana. Les métabolites d'intérêt à stabiliser s'entendront plus particulièrement ici, comme il sera exemplifié ici, des caroténoïdes totaux, dont la lutéine, les Chlorophylles et les vitamines. Pour la vitamine B12, non naturellement produite par la microalgue lorsque cultivée en hétérotrophie, elle est ajoutée au milieu de culture et assimilée par celle-ci. Dans un mode préférentiel de réalisation du procédé conforme à l'invention, la fermentation est réalisée dans des conditions particulières de culture hétérotrophique, qui garantissent une efficacité optimale quant à la stabilisation des métabolites d'intérêt sensibles à la dégradation oxydative produits par les microalgues. Ainsi, le procédé comprend la fermentation d'une biomasse de microalgues en conditions hétérotrophiques avec une première étape de croissance de la biomasse et avec une deuxième étape de culture carencée en un facteur nutritif. La production de biomasse comprend ainsi : o une première étape de fermentation en mode « batch », o une deuxième étape de fermentation en mode « fed-batch » qui se traduit, lorsque la source carbonée est entièrement consommée par la microalgue, par l'apport en continu de ladite source carbonée à une vitesse inférieure à la vitesse de consommation que la microalgue pourrait réaliser sans limitation. La société Demanderesse recommande de réaliser, en préambule de la phase de production de la biomasse proprement dite, une première phase de préculture (par fermentation en mode discontinu) qui permet alors la production d'une quantité de biomasse de microalgues nécessaire à l'ensemencement des fermenteurs de production proprement dits. Par exemple, si l'on choisit de cultiver une souche de Chlorelle telle Chlorelle sorokiniana, on obtient au terme de cette première phase de préculture une densité cellulaire (classiquement mesurée par densité optique à 600 nm) d'une valeur comprise entre 50 et 60, comme il sera exemplifié ci-après. Quant à la production de biomasse de microalgues, elle comprend donc une première étape de fermentation en mode « batch », avec un milieu de culture par exemple identique à celui mis en oeuvre à l'étape de préculture. Lorsque la consommation de la source carbonée par la microalgue est totale (ici : glucose = 0 g/1), on ajoute en continue ladite source carbonée à une vitesse inférieure à sa vitesse de consommation par la microalgue. La société Demanderesse a ainsi vaincu un préjugé technique, puisqu'il est communément admis que pour optimiser la production de lutéine par Chlorella (article de Wu et al cité supra), si la concentration élevée en glucose inhibe la croissance et la production de lutéine, il est recommandé de privilégier une concentration en glucose minimum, comprise entre 5 et 24 g/I dans le cas de la production de lutéine par C. pyrenoidosa. Les conditions de culture préconisées selon l'invention ne sont donc pas compatibles avec celles communément admises dans l'état de l'art pour optimiser la production de lutéine. Dans le cas de Chlorelle sorokiniana, la société Demanderesse recommande d'ajouter du glucose à une vitesse supérieure à 1 g/l/h en maintenant le glucose résiduel à 0 g/I. Cette vitesse se situe ainsi à environ 2 g/l/h en début de « fed batch », et elle peut augmenter jusqu'à 4 g/l/h en fin de culture. La fermentation est arrêtée (apport de glucose stoppé) lorsque la quantité de biomasse souhaitée est atteinte (par exemple entre 30 et 80 g/1). Une étude de stabilité (sur 14 mois) a été réalisée visant à étudier l'évolution de la teneur en caroténoïdes (lutéine), en vitamines (B9 et plus particulièrement B12) et en acides gras totaux de la biomasse obtenue par fermentation en conditions hétérotrophiques, en comparaison avec une biomasse produite en conditions phototrophiques. Comme il sera exemplifié ci-après, on constate une bien meilleure stabilité des métabolites produits par la Chlorelle, lorsque la biomasse est préparée en conditions hétérotrophiques selon le procédé préféré de l'invention. C'est ainsi que, par exemple, la biomasse obtenue en photobioréacteur a perdu pratiquement 80 % de sa concentration en lutéine après 14 mois de stockage, alors que celle de la biomasse préparée en conditions hétérotrophiques est inchangée. La présente invention concerne également l'utilisation d'une biomasse de microalgues produite en conditions hétérotrophiques comprenant une phase de culture carencée en un facteur nutritif pour stabiliser leurs métabolites sensibles à l'oxydation. De préférence, les microalgues sont choisies dans le groupe des microalgues du genre Chlorelle, plus particulièrement Chlorelle sorokiniana. De préférence, le facteur nutritif limitant est la source carbonée, en particulier le glucose. L'invention sera mieux comprise à l'aide des exemples qui suivent, lesquels se veulent illustratifs et non limitatifs. Exemple 1. Préparation de la biomasse de C. sorokiniana cultivées en conditions hétérotrophiques selon le mode préféré de l'invention Phase 1. Préculture La préculture permet la réactivation des souches et l'inoculation du fermenteur de production. Elle est réalisée en Erlenmeyers à partir d'un tube congelé de souche de Chlorelle sorokiniana (souche UTEX 1663 - The Culture Collection of Algae at the University of Texas at Austin - USA) et avec 600 ml de milieu de composition tel que présenté dans le tableau ici-dessous:30 Tableau 1. Macro Glucose 20 éléments (g/L) K21-1PO4 31-120 0,7 MgSO4 7H20 0,34 Acide citrique 1,0 Urée 1,08 Na2SO4 0,2 Na2CO3 0,1 Extrait de levures 1 clerol FBA 3107 (antimousse) 0,5 Micro Na2EDTA 10 éléments (mg/L) CaCl2.2H20 80 FeSO4.7H20 40 MnSO4.4H20 0,41 C0SO4.7H20 0,24 CuSO4.5H20 0,24 ZnSO4.7H20 0,5 H3B03 0,11 (NI-14)6Mo7027.41-120 0,04 Le pH est ajusté à 7 avant stérilisation par ajout de NaOH 8N. L'incubation se déroule à 28°C +1- 1°C sous agitation à 110 rpm (agitateur I NFORS Multitron) pendant 72 heures. La concentration finale en biomasse obtenue en fin d'incubation de chaque Erlenmeyer, par mesure de la DO à 600nm, se situe à environ 50-60. Phase 2. Production Les paramètres de conduite de la fermentation sont présentés dans le tableau 2 suivant. Tableau 2. Volume 13.5 L Après Inoculation - 16 à 20 L en final Température 28 - 30 °C PH 6.5 - 6.6 par NH3 28% p/p P02 > 20% (maintenue par agitation) Agitation 300 rpm Débit d'air 15 L/min Etape 1: fermentation en mode « Batch » Le milieu du batch est identique à celui de la préculture (tableau 1), mais sans l'extrait de levure et l'urée est remplacée par du NH4CI (tableau 3 ci-dessous). Tableau 3. Macro Glucose 20 éléments (g/L) K2HPO4 3H20 0,7 MgSO4 7H20 0,34 Acide citrique 1,0 NH4CI 1,88 Na2SO4 0,2 clerol FBA 3107 (antimousse) 0,5 Micro Na2EDTA 10 éléments (mg/L) CaCl2 80 FeSO4.7H20 40 MnSO4.4H20 0,41 C0SO4.7H20 0,24 CuSO4.5H20 0,24 ZnSO4.7H20 0,5 H3B03 0,11 (NI-14)6Mo7027.41-120 0,04 Etape 2 : fermentation en mode « Fed-batch » On ajoute également de la vitamine B12 en phase batch, à raison de 0,47 pg/I de milieu, de manière à ce qu'elle soit stockée dans la biomasse à une valeur de l'ordre de 400 pg / 100 g de biomasse sèche. En phase de « Fed-batch », un apport de milieu complet est réalisé avec une alimentation en glucose en continu à une vitesse inférieure à la vitesse de consommation permise par la souche de sorte que la teneur résiduelle dans le milieu est nulle. Cette vitesse se situe à environ 2 g/LAI/h (Al = après inoculation) en début de « Fed-Batch » et elle peut augmenter jusque 4 g/LAI/h en fin de culture. La concentration en glucose dans la solution d'alimentation peut aller de 400 à 800 g/L. Les sels sont apportés en continu, séparément ou en mélange avec le glucose. Le premier ajout doit être fait dès la fin du « batch », mais les sels ne doivent pas être apportés en une seule fois pour éviter d'inhiber la croissance de la souche. Le tableau 4 ci-dessous donne les besoins en sels pour 100 g de glucose : Tableau 4. Macro Glucose 100 éléments (g) K2HPO4 3H20 6,75 MgSO4 7H20 1,7 Acide citrique 5,0 Na2SO4 1,0 Micro Na2EDTA 50 éléments (mg) CaCl2 2H20 400 FeSO4.7H20 200 MnSO4.4H20 2,1 C0SO4.7H20 1,2 CuSO4.5H20 1,2 ZnSO4.7H20 2,5 H3B03 0,6 (NI-14)6Mo7027.41-120 0,2 L'alimentation en glucose est stoppée lorsque la densité cellulaire atteint 80 g/I. La biomasse est atomisée à une matière sèche > 95 %. Exemple 2. Etudes de stabilité des métabolites sensibles à l'oxydation produits par Chlorelle sorokiniana Une étude de stabilité a été réalisée sur une période de 14 mois visant à étudier l'évolution de la teneur en caroténoïdes, en lutéine, en vitamine B9 et plus particulièrement la vitamine B12, extraits des biomasses obtenues en hétérotrophie (par fermentation) ou en autotrophie (photobioréacteurs). Cette étude permet de démontrer l'impact du procédé de culture des chlorelles sur la stabilité de ces métabolites sensibles à l'oxydation. Deux biomasses sont comparées : la première produite selon les conditions de l'exemple 1, la seconde produite en photobioréacteur (tel le PBR 4000), dans des conditions classiques (Pulz et al., 2000, in Rehm H.-J., Reed G. (Eds), Biotechnology, vol 10, Second edition, VVeinheiom, 105-136). Les mesures sont réalisées sur 100 g de biomasse à plus de 95 % MS (matière sèche), produites par ces deux conditions opératoires. Evolution de la teneur en caroténoïdes totaux et en lutéine (dosages réalisés par HPLC) Biomasse produite par Biomasse produite en Fermentation photobioréacteur t = 0 t = 14 mois t = 0 t = 14 mois Lutéine 2100 1950 2650 525 (mg / kg) Caroténoïdes totaux 0,49 0,32 0,51 0,17 (g / 100g) La stabilité des caroténoïdes totaux est plus élevée dans la biomasse obtenue en hétérotrophie. Cette tendance est la même pour la lutéine ; la biomasse fermentée protège mieux la lutéine de la dégradation. Evolution de la teneur en vitamines (dosages réalisés selon méthodes AOAC 952.20- Vitamine B12) Apportée par le milieu de culture en hétérotrophie, la vitamine B12 a bien été assimilée par la biomasse de Chlorella sorokiniana ; ici son contenu est de l'ordre de 363 pg pour 100 g de biomasse sèche. Biomasse produite par Biomasse produite en Fermentation photobioréacteur t = 0 t = 14 mois t = 0 t = 14 mois Vitamine B12 363 304 120 107 (pg / 100 g) On observe une stabilité de la Vitamine B12 tout au long de l'étude dans les deux cas de figure. Les valeurs ont varié autour de 300pg/100g pour la biomasse produite en hétérotrophie et autour de 105pg/1400g pour la biomasse produite en autotrophie. Evolution de la teneur en Chlorophylles (dosages réalisés par spectrophotométrie) Biomasse produite par Biomasse produite en Fermentation photobioréacteur t = 0 t = 14 mois t = 0 t = 14 mois Chlorophylle A 2,21 1,7 2,33 1,32 (g / 100 g) Chlorophylle B 0,55 0,51 0,57 0,57 (g / 100 g) Si la teneur en Chlorophylle B reste stable dans les deux conditions opératoires, ce n'est pas le cas pour celle en Chlorophylle A, bien mieux stabilisée dans la biomasse produite par fermentation. En conclusion, les métabolites produits par les microalgues sont plus stables dans la biomasse produite par fermentation (ce qui traduit leur meilleure protection contre la dégradation oxydative à laquelle ils sont sensibles). Ce phénomène est d'autant plus marqué pour la teneur en lutéine, remarquablement plus stable dans la biomasse fermentée (alors que dégradées pratiquement à 80 % dans la biomasse produite en autotrophie). REVENDICATIONS1. Procédé de stabilisation de métabolites sensibles à l'oxydation choisis dans le groupe constitué des caroténoïdes comme la lutéine, des acides gras monoinsaturés et polyinsaturés comme l'acide palmitoléique, l'acide oléique ou l'acide linoléique, des pigments chlorophylliens comme la chlorophylle A et B, et des vitamines comme les vitamines B9 et B12, pris seuls ou en combinaison, plus particulièrement des caroténoïdes, le dit procédé comprenant : - la fermentation d'une biomasse de microalgues en conditions hétérotrophiques comprenant une phase de culture carencée en un facteur nutritif ; et - le stockage de la biomasse sèche au sein de laquelle les métabolites sensibles à l'oxydation sont stabilisés. 2. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que les microalgues sont choisies dans le groupe des microalgues du genre Chlorelle, plus particulièrement Chlorelle sorokiniana. 3. Procédé selon l'une ou l'autre des revendications 1 et 2, caractérisé en ce que le procédé ne comprend pas l'ajout d'antioxydant exogène à la dite biomasse sèche. 4. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisé en ce que le facteur nutritif carencé est la source carbonée. 5. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisé en ce que le procédé de production de la biomasse de microalgues en conditions hétérotrophiques comprend: o une première étape de fermentation en mode « batch », o une deuxième étape de fermentation en mode « fed-batch » qui se traduit, lorsque la source carbonée est entièrement consommée par la microalgue, par l'apport en continu de ladite source carbonée à une vitesse inférieure à sa vitesse de consommation par la microalgue. 6. Utilisation d'une biomasse de microalgues produite en conditions hétérotrophiques comprenant une phase de culture carencée en un facteur nutritif pour stabiliser leurs métabolites sensibles à l'oxydation. 7. Utilisation selon la revendication 6, caractérisée en ce que les microalgues sont choisies dans le groupe des microalgues du genre Chlorelle, plus particulièrement Chlorelle sorokiniana. 8. Utilisation selon la revendication 6 ou 7, dans laquelle le facteur nutritif carencé est la source carbonée.