Brevet FR3008696A1 — publié le 20150123

La présente invention se rapporte au domaine de la production d'auxiliaires technologiques biotiques stimulateurs utilisables en agriculture et en agronomie, en substitution partielle ou totale d'engrais et/ou de traitement phytosanitaire. Il est connu que les inocula sont des bactéries ou des champignons microscopiques apportéé dans le sol afin d'améliorer le développement des plantes par : o libération dans le sol de facteurs nutritifs qui sont utilisés par la plante, o établissement de relations symbiotiques avec le système racinaire de la plante pour permettre l'accomplissement de fonctions vitales à la plante, comme la fixation et l'utilisation de l'azote atmosphérique, o action antagoniste contre les agents pathogènes de la plante. A cet effet, les rhizobactéries qui nodulent les racines des légumineuses sont les plus couramment utilisées, tout comme les champignons mycorhiziens qui colonisent les racines pour aider la plupart des plantes à retenir l'eau pour une meilleure absorption des nutriments. Peuvent être utilisés en inoculation les microorganismes non pathogènes dont, sous appellation générique et sans être exhaustif, on cite par exemple : Azotobacter spp., Acidovorax facilis, Bacillus subtilis, Flavobacterium spp., Pseudomonas spp., Rhodococcus rhodochrous, Bacillus chitinoporus, Bacillus laterosporus, ainsi que d'autres genres. Pour la protection de la plante on peut également citer des microorganismes à effet préventif, sans que la liste soit limitative : Bacillus thuringiensis, Saccharopolyspora spinosa, Meterhizium anisopliae ou encore Beauvaria bassiana. Les inocula commerciaux sont disponibles sous forme de poudres, de granulés et de liquides. En règle générale, la tourbe constitue le support préféré sous forme de poudre. Des supports minéraux, la kaolinite et la vermiculite, sont également utilisés, mais de façon plus restreinte. Les inocula sont parfois directement pelliculés sur les graines La demande de brevet international WO 2004/112462 (29.12.2004) divulgue un support élaboré à partir de noir de carbone d'os animal formant des granulés allant de 30 0,001 mm à 10 mm, utilisable pour apporter du phosphore naturel, pour un contrôle biologique des pathogènes du sol, ainsi que pour la décontamination du sol et pour l'activation et la fertilisation du sol. Ce document cite cependant le brevet WO 96/37433 qui cible un désavantage de ce type de support dû à son mode d'obtention qui nécessite un traitement par des solutions acides et alcalines qui ne sont pas souhaitables pour l'immobilisation et la conservation des inocula microbiens d'un point 5 de vue physico-chimique et biologique. Un autre désavantage de ce type de matériau est sa grande solubilité dans l'eau, ce qui abaisse fortement l'apport biologique à la culture. Ce type de support va permettre d'accélérer le développement microbien sans pour autant prolonger la durée de la phase de reproduction de la souche. C'est d'ailleurs le même résultat atteint et décrit dans le brevet US 5173424 qui utilise à cet 10 effet l'ajout de lécithine de soja sur le support d'inoculum pour accélérer le développement de Rhizobium japonicum. Plusieurs types de supports d'inocula solides ont été étudiés comme alternative à la tourbe, dont l'encapsulation de microorganismes dans des microparticules en matrice polymère permettant d'immobiliser lesdits microorganismes et qui apportent une facilité 15 de production, de stockage et de manipulation (Cassidy M.B., Lee H. et Trevors J.T. 1996 - J. Ind. Microbiol. 16 :79-101). Le brevet français FR2590904 (4/12/1985) décrit l'incorporation de microorganismes filamenteux dans des billes d'alginate de calcium qui sont dispersées dans le sol sous forme gel obtenue après réhydratation des billes avec un tampon, par exemple un tampon phosphate. La demande de brevet WO 20 00/59949 (06/04/1999) décrit quant à elle un antifongique associé à une matrice chitosan. La chitine est également décrite comme support de biofertilisation bactérienne par la demande de brevet français FR 2 941 589 Al (03/02/2009). Quoique de grande efficacité, la chitine présente un double problème : son coût trop élevé et sa disponibilité plutôt aléatoire et restreinte à une zone géographique limitée. 25 Par ailleurs, des supports d'origine végétale ont déjà été évoqués (Smith R.S 1992 - J. Microbiol. 25 :739-745). Cette notion est confirmée par les demandes de brevet FR 2 593 191 (1996) et EP 0236 156 A2 (17/01/1986) qui décrivent un support d'inoculum en pulpe de raisins séchée et broyée. Le chardon aussi est utilisé par certains auteurs. 30 Pour leur utilisation, ces supports subissent une série d'opérations à savoir : - séchage dans une,étuve à 70°C pendant 48 heures, - broyage en pellets ou en poudre, - neutralisation à un pH ajusté entre 6,8 et 7 par addition de CaCO3. Mais tous ces supports d'inoculum se limitent particulièrement au transport et au stockage des cellules microbiennes, sans en assurer une multiplication continue, quand bien même des éléments accélérateurs de développement y sont incorporés avec les microorganismes pour faciliter le redémarrage du cycle de développement une fois les conditions favorables réunies dans le sol. En effet, le pouvoir d'absorption d'eau de ces supports est relativement limité à un taux en poids d'eau de leur poids de : 17,5% pour la tourbe, 23,5% pour la tourbe de France, 17,8% pour la kaolinite, 19,25% pour la vermiculite et 26,25% pour le chardon. D'après Saint-Macary et Neyra (1992), le volume nécessaire optimal d'inoculum liquide pouvant être absorbé dans le support est généralement compris entre 60% et 70% du volume de rétention d'eau, ce qui limite d'avantage la capacité des supports qui ont été cités. D'après les travaux de Stephens et Rask (2000), il est noté que le support doit présenter deux propriétés fondamentales : permettre la croissance des microorganismes en place et les maintenir sur une période acceptable de conservation. La propriété de multiplication des microorganismes n'est pas recherchée. Le brevet européen EP 0 443 040 B1 (05/9/1990) décrit un autre type de dispositif de culture de microorganismes qui comprend un textile non-tissé recouvert ou imprégné d'éléments nutritifs en solution dans un milieu de culture contenant des microorganismes infectieux envers la vermine des plantes. Le textile ainsi imprégné est séché puis enroulé en plusieurs couches autour de la tige, de la branche ou du tronc d'arbre à traiter. Ce dispositif exclusivement externe reste tributaire des aléas climatiques qui vont avoir un effet direct sur la culture microbienne. Les microorganismes cultivés ne nécessitent aucune activité symbiotique avec la plante traitée. Dans le même cadre, le brevet US 5786188 (28/7/1998) décrit la préparation d'un inoculum de champignons microscopiques. Ledit inoculum est constitué par un substrat fibreux d'origine végétale, en pellets enrobés avec une suspension de champignons microscopiques dans de l'hydrogel, un alginate ou de l'acide alginique. Les éléments nutritifs sont dans les pellets, mais pour un développement des microorganismes en surface, exclusivement des champignons. Ce type de support spécifique aux champignons microscopiques ne peut servir à la culture de bactéries qui se développent en milieu fermé ou semi-fermé. Il existe donc, au regard de l'art antérieur, le besoin de fournir un inoculum solide dont le support offre au moins les fonctions fondamentales sous-citées, en étant à la fois : - support de stockage et de conservation de microorganismes revivifiables, - support de transport de microorganismes dans les meilleures conditions de manipulation, - support de croissance des microorganismes pour leur revivification et - support de multiplication des microorganismes revivifiés, - support de protection des microorganismes face aux éléments du milieu interstitiel, - support de protection des microorganismes et de leur milieu de culture contre les effets de lessivage, - support de protection des microorganismes contre le stress hydrique. Lesdites fonctions permettent avantageusement d'obtenir une densité importante et durable de microorganismes dans le milieu interstitiel, pour optimiser par exemple les relations symbiotiques entre le système racinaire et les microorganismes ou l'impact biotique stimulant le développement et la productivité de la plante ou protégeant cette dernière. Pour mieux comprendre l'invention, on entend par « agrogranulat superabsorbant à volume variable », au singulier ou au pluriel, un granulé obtenu par le traitement chimique et thermomécanique de polymères d'origine végétale et ayant une grande capacité d'absorption d'eau ou de solutions aqueuses en augmentant de volume sans se déliter, puis revenant à son volume initial en se déshydratant. On entend par « minifermenteur naturel », au singulier ou au pluriel, un agrogranulat superabsorbant à volume variable dans lequel est stocké du milieu nutritif ou milieu de culture anhydre dont vont profiter les cellules microbiennes revivifiables introduites dans ledit agrogranulat pour y croître puis s'y multiplier lorsque les conditions hydriques sont satisfaites par un apport d'eau. Les microorganismes produits peuvent sortir par migration via le réseau poreux dudit agrogranulat. On entend par « minifermenteur naturel continu », au singulier ou au pluriel, le minifermenteur précédemment défini dans lequel un apport d'eau répété solubilise le milieu nutritif ou milieu de culture de manière continue et permet ainsi sa disponibilité renouvelée pour les microorganismes qui peuvent ainsi continuer à se multiplier. Il est entendu que lesdits microorganismes, au fur et à mesure de leur production, migrent dudit minifermenteur dans le milieu interstitiel et vers le système racinaire pour être pris en compte par la relation symbiotique avec les plantes. On entend par « milieu interstitiel » l'espace dans le sol entre l'inoculum solide et le système racinaire de la plante. La figure 1 représente les courbes de l'évolution comparée de deux inocula : inoculum liquide et inoculum supporté à 1/100e La figure 2 représente les courbes de l'évolution comparée de deux inocula : inoculum liquide et inoculum supporté à 1/1 La demande de brevet FR 12/01439 (22/05/2012), déposée par la demanderesse de la présente, décrit un agrogranulat superabsorbant à volume variable présentant la particularité de pouvoir absorber et mettre en réserve de l'eau ou une solution aqueuse en grande quantité allant jusqu'à 500% en poids sans se déliter et sans percolation. La présente invention propose de surmonter les inconvénients des systèmes d'inocula antérieurs évoqués précédemment grâce à un agrogranulat superabsorbant à volume variable fonctionnant en minifermenteur naturel pouvant absorber une substance ou des éléments microscopiques en suspension hydrique sans les perdre par lessivage. On souhaite en particulier pouvoir fabriquer un système d'inoculum microbien solide supporté dans ledit agrogranulat, réalisant en même temps la fonction de support et la fonction de fermenteur permettant la multiplication en son sein des microorganismes composant ledit inoculum et dont les divers nutriments et facteurs de croissance du milieu nutritif se trouvent déjà à l'état sec dans ledit fermenteur sans risque d'être lessivés. Ledit système d'inoculum est ainsi conditionné pour accroître son efficacité et sa durée d'activité biologique. Selon l'invention, on propose la réalisation d'un nouveau type d'inoculum solide supporté en quantité conséquente dans un support biodégradable avec son milieu nutritif en quantité nécessaire et également sec, dont les cellules microbiennes peuvent revivifier puis croître et se multiplier comme dans un fermenteur, dès lors que le support est réhydraté, y compris lorsque ledit support est enterré. Le choix des microorganismes à valeur d'usage fixée composant l'inoculum doit tenir compte du fait que ceux-ci soient en capacité de pouvoir se multiplier même en milieu fermé et de pouvoir migrer hors du minifermenteur grâce à une caractéristique biologique d'affinité avec le système racinaire de la plante. L'invention a ainsi pour objet un inoculum solide supporté dans un agrogranulat superabsorbant à volume variable fonctionnant en minifermenteur naturel, préchargé en milieu nutritif anhydre favorisant la croissance suivie de la multiplication continue des cellules microbiennes revivifiées, par réhydratation et dissolution progressives dudit milieu nutritif, en évitant son lessivage par les eaux de pluie et d'arrosage et en stabilisant ainsi cette source biologique pour accroître son efficacité et sa durée d'activité biotique. Un premier aspect de l'invention concerne ainsi un inoculum solide supporté dans un agrogranulat superabsorbant à volume variable fonctionnant en minifermenteur naturel continu préchargé en milieu nutritif concentré anhydre favorisant la multiplication continue des microorganismes revivifiés incorporés en faible densité, pour une efficacité et une durée d'activité biologique accrues, ledit inoculum assurant les propriétés fondamentales permettant : a. la conservation et le stockage des microorganismes revivifiables, b. le transport des microorganismes dans les meilleures conditions de manipulation et d'application en champs, c. la croissance des microorganismes revivifiés pour une reprise du cycle de développement lorsque les conditions favorables sont réunies, d. la multiplication intra-support des microorganismes, e. la protection des microorganismes face aux éléments négatifs du milieu interstitiel, f. la protection des microorganismes et de leur milieu de culture contre les effets de lessivage, g. la protection des microorganismes contre le stress hydrique. Ledit support selon l'invention est un agrogranulat superabsorbant à volume variable obtenu selon le procédé décrit par la demande de brevet FR 12/01439. Il apporte un gain sur le procédé technologique dans la mesure où il ne nécessite pas les opérations décrites pour la mise en condition des supports déjà connus décrits dans l'art antérieur. En effet, il est à noter que : son pH par exemple est déjà ajusté lors de son élaboration, il est de granulométrie régulière favorable à la manipulation et à l'application en champs à l'aide des outillages couramment utilisés en agriculture, sa structure plastique lui confère la caractéristique de varier de volume en gonflement par absorption d'eau ou de solution aqueuse et en rétractation par relargage de ces dits liquides, permet d'éviter son délitement dans ces conditions, la capacité de varier son volume en absorbant de l'eau ou une solution aqueuse est favorable à la revivification rapide et à la multiplication des microorganismes dans le réseau poreux, contrairement à ce qui se passe dans matériaux poreux rigides dans lesquels les microorganismes étouffent, sa grande capacité d'absorption d'eau ou de solution aqueuse associée à son fort pouvoir de rétention d'eau ou de solution aqueuse permet d'éviter la percolation des liquides retenus et donc le lessivage des éléments en suspension ou dissous, tout en préservant les microorganismes du stress hydrique grâce à une présence d'eau toujours suffisante et non excédentaire dans ledit support, - son grand réseau de pores favorise la migration des microorganismes de l'intérieur vers l'extérieur par différence de pression ou par les effets des agents biotiques. Le procédé d'obtention dudit agrogranulat superabsorbant à volume variable 25 selon FR 12/01439 consiste à élaborer une matrice composite plastique biodégradable composée d'un mélange de biopolymères protéiques d'origine végétale (exemple : tourteaux de tournesol, de soja, de colza, de luzerne ou de lin), de biopolymères saccharidiques riches en amidon, hémicelluloses et pectines, et de tissus naturels de cellules hyalines ou hydrocystes (exemple : sphaigne). 30 Plus précisément, le support d'inoculum solide conforme à l'invention présente un taux de matière sèche compris entre 92% et 95%, ainsi qu'une grande capacité d'absorber et de mettre en réserve de l'eau ou une solution aqueuse, grâce à un pouvoir absorbant allant jusqu'à 500% en poids, permettant ainsi une activité biologique - - - - -20 interne intense, ce qui lui confère la qualité de minifermenteur. Ledit support n'absorbe plus lorsque sa limite d'absorption est atteinte, ce qui préserve de la percolation et donc du lessivage car l'eau ou la solution aqueuse absorbée est gardée dans la structure. L'élaboration dudit agrogranulat en minifermenteur naturel selon l'invention est réalisée en préchargeant l'agrogranulat respirant superabsorbant en milieu nutritif concentré liquide correspondant au genre de microorganismes à inoculer, puis en le déshydratant avant d'y incorporer lesdits microorganismes en phase liquide, puis de le déshydrater à nouveau avant de l'emballer pour stockage. Selon une composition préférée qui conduit aux meilleurs résultats selon l'invention, le milieu nutritif est adapté à la souche de microorganismes à inoculer et formulé suivant une composition choisie optionnellement parmi : a) YMB (Yeast - Mannitol - Broth) (Vincent, 1970), b) YM (Yeast - Mannitol), c) BHI (Brain Heart Infusion), mais aussi tout autre milieu adéquat en rapport avec les microorganismes à traiter. Selon un mode de réalisation de l'invention, le milieu de culture incorporé dans le support minifermenteur est en phase aqueuse dont le taux de matière sèche, constituée par divers nutriments et facteurs de croissance particulièrement favorables à la souche de microorganismes à inoculer, est de 2 à 10 fois plus élevé que celui du milieu de culture liquide adapté selon la norme recommandée pour la même souche de microorganismes. Avantageusement, le volume de milieu nutritif liquide concentré à incorporer dans ledit support peut varier entre 25% et 500% en poids. Les microorganismes concernés par l'invention peuvent être, sans pour autant que cette liste soit limitative, des champignons mycorhiziens, des rhizobactéries, ainsi que d'autres microorganismes pouvant contribuer à l'amélioration de la vie des plantes, à leur protection et à leur traitement biotique comme : Azotobacter spp., Acidovorax facilis, Flavobacterium spp., Pseudomonas spp., Rhodococcus rhodochrous, Bacillus subtilis, Bacillus chitinoporus, Bacillus laterosporus, Bacillus thuringiensis, Saccharopolyspora spinosa, Meterhizium anisopliae ou encore Beauvaria bassiana. Selon un mode de fonctionnement de l'invention, l'eau ou la solution aqueuse absorbée en petite quantité dans le minifermenteur ne dissout que partiellement le milieu de culture sec qui s'y trouve en forte concentration, en respectant les lois physico-chimiques de la dissolution, permettant ainsi aux cellules microbiennes revivifiables stockées de s'en servir pour croître et se multiplier. En effet, selon un aspect de l'invention, la présence du milieu nutritif permet une revivification rapide des cellules microbiennes. La dissolution partielle du milieu de culture anhydre permet d'assurer une réserve pour la continuité du cycle de production des cellules microbiennes dans le minifermenteur. La présence du milieu de culture à l'état sec dans le minifermenteur contribue par ailleurs à l'optimisation du volume d'eau stockée à l'avantage d'une activité hydrique favorable aux microorganismes. En effet, une activité hydrique trop élevée peut conduire à une mortalité élevée des cellules microbiennes. Les cellules microbiennes produites dans le minifermenteur selon l'invention migrent par le réseau poreux dudit minifermenteur vers le milieu interstitiel et le système racinaire de la plante réceptrice, au fur et à mesure de leur production, grâce à la relation symbiotique et aux dispositions biologiques des deux entités cellules microbiennes et système racinaire récepteur. Le cycle de production des cellules microbiennes dans ledit minifermenteur peut ainsi continuer tant qu'il y a de l'eau apportée et du milieu nutritif accessible aux microorganismes avec une activité hydrique adaptée, les métabolites produits par les cellules microbiennes à l'intérieur du minifermenteur étant exportés par la migration des cellules vivantes vers le milieu interstitiel. Toutefois, la quantité d'eau ou de solution aqueuse pouvant être absorbée par le support est limitée naturellement par la limite du pouvoir absorbant et aussi par la présence du milieu nutritif anhydre dans ledit agrogranulat. Selon un mode de réalisation avantageux de l'invention, le minifermenteur mis en conditions de fonctionnement continu permet de réduire considérablement la densité de cellules microbiennes viables à inoculer dans ledit support à une densité comprise entre 1/500e et 1/10e de la quantité recommandée par la norme pour l'inoculum liquide, mais préférentiellement à une densité comprise entre 1/200e et 1/100e de ladite quantité recommandée par la norme pour l'inoculum liquide. Cette densité atteint rapidement la densité recommandée par la norme en quelques jours seulement. Les normes indiquent par exemple un nombre de Rhizobium spp. par gramme de support d'au moins 5 x 108 cellules (Beck et al., 1993). En inoculant selon l'invention par exemple n x 104 cellules par gramme (n variant entre 2 et 9) dans le minifermenteur selon l'invention, on obtient la densité de cellules viables recommandée par les normes en 3 à 5 jours dans le milieu interstitiel, ce qui représente un gain très important de volume de support et d'inoculum pour un coût opérationnel moindre par rapport aux rendements attendus en apport de facteurs de développement à la plante, ou de l'envergure de l'action antagoniste contre les agents phytopathogènes. En effet, de manière inattendue, le niveau de production de cellules microbiennes à partir du minifermenteur selon l'invention atteint des valeurs comprises entre 109 cellules et n x 1010 cellules par gramme de support en une durée variable, en fonction des séquences d'apport d'eau et de la souche microbienne inoculée, ce qui est largement supérieur à la norme conseillée qui est de n x 108 cellules par gramme de support. On note une efficacité et une durée d'activité biologiques accrues exprimées par une bio-augmentation de la population microbienne qui peut ainsi se multiplier en intra-support de 104 cellules à 106 cellules supplémentaires pour atteindre des densités de l'ordre n x 1010 UFC (Unité Formant Colonie) dans le sol ensemencé en l'espace de 3 à 5 jours. Le support selon l'invention fonctionne donc en véritable fermenteur dans lequel les microorganismes croissent et se multiplient vite en partant d'une faible densité pour atteindre rapidement et voire dépasser les valeurs de densités microbiennes préconisées par les normes. Selon l'invention, 'la capacité de rétention d'eau du support minifermenteur permet d'éviter le lessivage tant du milieu de culture que des cellules microbiennes par l'eau de pluie ou d'arrosage. L'inoculum supporté se maintient à proximité du système racinaire et augmente ainsi les rendements des relations symbiotiques entre le système racinaire de la plante et les cellules microbiennes devant le coloniser. Selon un second aspect de l'invention, l'inoculum solide supporté dans un agrogranulat superabsorbant à volume variable fonctionnant en minifermenteur naturel conforme à l'invention est obtenu par la mise en oeuvre du procédé qui consiste à : a) incorporer dans le support en agrogranulat superabsorbant à volume variable le milieu nutritif liquide concentré convenant à la souche à inoculer, à un taux compris entre 25% et 500% en poids, mais préférentiellement à un taux adapté aux microorganismes à valeur d'usage fixée ; b) déshydrater le support obtenu en a) entre 40°C et 55°C jusqu'à un taux de matière sèche compris entre 90% et 95% en poids ; c) stériliser le support sec obtenu en b) dans des containers étanches ; d) incorporer la souche microbienne ayant été préalablement cultivée dans le support stérile obtenu en c) en densité microbienne variant entre 11500e et 1110e de la quantité recommandée par les normes pour un inoculum liquide de la même souche, mais préférentiellement en densité microbienne comprise entre 11200e et 11100e de la quantité recommandée par les normes pour un inoculum liquide de la même souche ; e) déshydrater le support chargé obtenu en d) par étuvage entre 35°C et 40°C pour obtenir un inoculum solide supporté à un taux de matière sèche compris entre 90% et 95% en poids ; f) emballer l'inoculum solide supporté obtenu en e) à l'abri de l'humidité. Selon le mode de réalisation du procédé de l'invention, l'incorporation du milieu nutritif liquide concentré ainsi que la biomasse à inoculer dans le support se fait préférentiellement par aspersion, mais elle peut être également faite par pulvérisation 15 ou encore par trempage rapide. L'inoculum solide supporté dans un agrogranulat superabsorbant à volume variable fonctionnant en minifermenteur selon l'invention présente de nombreux avantages, le premier étant d'être pratique, de pouvoir être stocké et transporté en emballages hermétiques en toute quiétude, afin d'être appliqué facilement selon la 20 disponibilité de l'agriculteur, en utilisant du matériel agricole courant. Il n'est pas emporté par le vent, ne, sature pas les sols parce qu'il est biodégradable. Il permet d'éviter les effets de lessivage tant de la population microbienne utile au système racinaire naissant que du milieu de culture nécessaire à ladite population microbienne. Le milieu nutritif incorporé joue à la fois un rôle de starter pour le démarrage du cycle et 25 de milieu de culture pour la multiplication intra-support continue de la souche de microorganismes inoculée. Il met à l'abri du stress hydrique la biomasse microbienne en développement en son sein. L'utilisation de l'inoculum solide supporté en minifermenteur selon l'invention permet de minimiser la quantité d'inoculum à appliquer, ce qui est source d'économie 30 conséquente dans la gestion de la production de la biomasse microbienne à partir d'une souche spécifique. Il permet également de protéger la souche microbienne contre les effets négatifs des éléments du sol comme son pH et sa composition élémentaire chimique qui d'ailleurs influence beaucoup le pH. Les exemples qui suivent permettront d'illustrer l'invention et de mieux en comprendre les différents avantages. Par commodité, dans ce qui suit les abréviations suivantes seront utilisées : - UFC : unité formant colonie - YM : milieu nutritif liquide (Yeast Mannitol) - YM2x : milieu nutritif liquide 2 fois plus concentré que le milieu liquide YM EXEMPLE 1 - Comparaison de l'évolution dans la terre d'un inoculum liquide et d'un inoculum chargé dans un support minifermenteur On utilise un agrogranulat respirant superabsorbant en tourteau de tournesol et 10 sphaigne fabriqué dans9 les laboratoires de la demanderesse, ayant une capacité d'absorption de 500% en poids de liquide. La souche utilisée est une bactérie du sol du genre Rhizobium : Rhizobium phaseoli DSM 30137 de la collection DSMZ (deutsche Sammlung von Mikroorganismen und Zelkulturen) 15 On utilise un milieu de culture spécifique à cette souche dont la composition est décrite dans les tableaux 1 et 2. La concentration du milieu de culture (YM) est celle qui est normalement utilisée pour la culture de la souche en présence, tandis que la concentration du milieu de culture (YM2x) destiné à être incorporé dans le support est 2 fois la concentration normale de culture (YM). Produit Fournisseur Référence Concentration Extrait de Levure BIOCAR Al 202GC 0,4 g/L Mannitol PROLABO 25311.297 10,0 g/L K21-1PO4 PROLABO 26931.263 0,5 g/L MgSO4, 7H20 SIGMA M1880 0,2 g/L NaCI PANREAC 121659,1211 0,1 g/L pH ajusté à 7,0 (H2SO4), stérilisation en autoclave 20 minutes à 121°C 20 Tableau 1 : composition du milieu de culture liquide YM Produit Fournisseur Référence Concentration Extrait de Levure BIOCAR A1202GC 0,8 g/L Mannitol PROLABO 25311.297 20,0 g/L K2HPO4 PROLABO 26931.263 1,0 g/L MgSO4, 7H20 SIGMA M1880 0,4 g/L NaCI PANREAC 121659,1211 0,2 g/L pH ajusté à 7,0 (H2SO4), stérilisation en autoclave 20 minutes à 121°C Tableau 2 : composition du milieu de culture liquide YM2x On asperge 1 gramme d'agrogranulats avec 1 millilitre de milieu nutritif concentré YM2x pour son incorporation, soit une incorporation de 100% du poids d'agrogranulats 5 en YM2x. Puis les agrogranulats sont séchés à 92% en poids de matière sèche. Puis, on inocule 106 bactéries soit 1/100è de la quantité recommandée par les normes en milieu liquide, toujours par aspersion sur les agrogranulats secs pour obtenir un inoculum sur support. On prépare des lots de 100 grammes de terre broyée et stérilisée que l'on 10 dispose dans des boîtes de Pétri carrées de 1 dm2 de superficie. On répartit les lots ainsi constitués en deux groupes : - Groupe 1 dit ESSAI N°1 avec des lots de 100 g de terre inoculés avec 1 g d'inoculum sur support, environ 106 bactéries/dm2 soit 104 bactéries/g de terre ; - Groupe 2 dit ESSAI N°2 avec des lots de 100 g terre inoculés avec un 15 inoculum liquide pour 106 bactéries/dm2 soit 104 bactéries/g de terre. On pulvérise 5 ml d'eau courante stérile à la surface de la terre et on met à incuber à 28°C. L'arrosage est répété à l'identique tous les jours. Après 5 jours d'essai, on procède au dénombrement des bactéries dans chaque lot et on compare la moyenne de l'ESSAI N°1 avec celle de l'ESSAI N°2. 20 On obtient dans l'ESSAI N°1 un plateau d'environ 3,4.1010 UFC/boîte. En comparaison, on obtient dans l'ESSAI N°2 un plateau d'environ 1,5.1010 UFC/boîte, soit moins de la moitié de l'ESSAI N°1, ce qui donne une différence très importante de l'ordre de 1,9.1010 UFC/bôîte. Le support en agrogranulats respirants superabsorbants a donc fonctionné en fermenteur. EXEMPLE 2 - Etude comparé entre 3 inocula sur une longue durée : inocula liquide, un inoculum supporté avec 1/100e de l'inoculum liquide et un inoculum supporté à 1/1 de l'inoculum liquide (Figures 1 et 2) On utilise de la terre de culture prélevée dans un champ régulièrement cultivé. On utilise comme support d'inoculum des agrogranulats respirants 10 superabsorbants fabriqués dans les laboratoires d'AB7 INNOVATION. On utilise des bactéries du sol du genre Rhizobium de la souche Rhizobium leguminosarum CPI 106959 de l'Institut Pasteur. On utilise un milieu de culture liquide YM, dont la composition est donnée par le tableau 3, pour la culture de la souche et comme constituant de l'inoculum liquide. 15 Tandis que le milieu de culture YM2x est utilisé pour enrichir le support avant d'y inoculer des bactéries ; sa composition, donnée dans le tableau 4, indique qu'il est 2 fois plus concentré que le milieu YM. Produit Fournisseur Référence Concentration Extrait de levure VWR VM445253.224 1 g Mannitol VWR K93281282.239 10 g Extrait de terre AB7 INNOVATION ECH4158T 200 ml Eau distillée AB7 INNOVATION ECH4158E 800 ml pH ajusté à 7 ± 0,2 (H2SO4), stérilisation en autoclave 30 mn à 110°C Tableau 3 : Composition du milieu de culture liquide YM 20 Produit 9Fournisseur Référence Concentration Extrait de levure VWR VM445253.224 2 g Mannitol VWR K93281282.239 20 g 400 ml Extrait de terre AB7 INNOVATION ECH4158T Eau distillée AB7 INNOVATION ECH4158E 1600 ml pH ajusté à 7± 0,2 (H2SO4), stérilisation en autoclave 30 mn à 110°C Tableau 4 : Composition du milieu de culture liquide YM2x 25 a. Préparation de la terre De la terre de culture est placée dans un container étanche pour sa stérilisation en étuve à 110°C pendant 4 jours. Puis elle est répartie en 90 lots de 100 grammes. b. Montage des tests On dispose de 90 pots stériles de 125 millilitres, de 6,5 centimètres de diamètre et 5,3 centimètres de hauteur, à fond percé de trous pour permettre le drainage à l'extérieur d'excès d'eau d'arrosage. Ils sont répartis en trois groupes de 30 pots : groupe 1 pour l'inoculum liquide, groupe 2 pour l'agrogranulat inoculé au 1/100e de l'inoculum liquide et groupe 3 pour l'agrogranulat inoculé à 1/1 de l'inoculum liquide. On obtient une répartition de bactéries dans les pots précisée dans le tableau 5 : Groupe de test Inoculum Nombre de bactéries/g de terre 1 Inoculum liquide 2.106 2 Agrogranulat à 1/100e d'inoculum liquide 2.104 3 Agrogranulat à 1/1 d'inoculum liquide 2.106 Tableau 5 : Répartition des bactéries dans les pots de terre Puis on procède comme suit : - Dans chaque pot, on place uniformément 80 grammes de terre stérile ; - On y disperse uniformément l'inoculum à raison de 1mL pour le liquide à 2.108 cellules et 1g de support inoculé à 1/100e soit 2.106 cellules et à 1/1 soit 2.108 cellules par pot de 100g de terre ; - On recouvre avec le reste de terre soit 20 grammes, puis on tasse légèrement ; - On arrose avec 15 cm3 d'eau distillée et on place les échantillons dans une étuve à 28°C. c. Suivi des tests Pour chaque groupe, on prévoit un arrosage avec 15 cm3 d'eau tous les deux jours et 25 cm3 d'eau les derniers jours de semaine. On prélève deux pots de chaque groupe tous les quatre jours pour décomptage de cellules bactériennes. Pour cela : - On mélange tout le contenu du pot pour une bonne homogénéisation dans un 25 mixeur puis on en prélève 5g dans un tube à essai ; - On verse 10m1 d'eau stérile dans le tube puis on agite vigoureusement au vortex ; - On laisse décanter puis on prélève le surnageant pour le comptage des UFC et l'observation et comptage au microscope. Les UFC sont réalisées sur gélose dans des boîtes de Pétri. d. Analyse des résultats Les résultats obtenus après 45 jours de test sont illustrés par les graphiques des figures 1 et 2 qui représentent les courbes d'évolution des trois inocula : inoculum liquide, inoculum supporté à 1/100e et inoculum supporté à 1/1. Leur analyse conduit aux conclusions suivantes : 1. La comparaison de l'évolution entre l'inoculum liquide et l'inoculum supporté à 1/1, illustrée par la figure 2, montre qu'en partant de la même densité de bactéries/gramme de terre, soit 2.106, l'inoculum supporté résiste mieux, ce qui démontre que le support joue un rôle de protection de la population microbienne par rapport aux éléments négatifs du sol comme le pH par exemple, mais aussi les éléments environnementaux comme le lessivage par l'eau d'arrosage dont l'excès passe par les trous pratiqués dans le fond du pot. 2. L'observation de l'évolution de l'inoculum supporté à 1/100e montre un effet de multiplication rapide des bactéries dans le support qui fonctionne ainsi en véritable fermenteur. Le milieu de culture sec contenu dans le support se dissout à l'arrosage pour jouer un grand effet starter et soutient par la suite la multiplication microbienne. L'inoculum supporté à 1/100e finit ainsi par dépasser le niveau de l'inoculum liquide dès le 5ème jour du test pour le rester jusqu'au dernier jour de l'étude (figure 1). On peut donc penser que le minifermenteur ainsi constitué joue également un rôle de protection de la population microbienne, mais aussi du milieu de culture dont les bactéries continuent à disposer pour se multiplier. 3. L'évolution comparée des deux inocula supporté, à 1/1 et 1/100e, fait ressortir les phénomènes inhérents à la fermentation en fermenteur fermé à savoir : a. Une densité de cellules microbiennes trop élevée dans un fermenteur conduit à une mortalité de cellules due aux métabolites produits par la biomasse. Cette mortalité est atténuée par le renouvellement du milieu de culture. C'est le cas pour l'inoculum supporté dont le milieu de culture se renouvelle à chaque arrosage. b. La multiplication microbienne est plus probante en partant avec une plus faible densité de cellules pour le même volume de fermenteur. Avec 11100e de l'inoculum, on obtient des résultats meilleurs tout en réalisant une économie considérable sur la quantité d'inoculum à utiliser et un bénéfice conséquent sur les coûts. En conclusion, l'utilisation du support minifermenteur naturel permet de protéger les microorganismes contre les éléments négatifs du sol et contre le lessivage tant du milieu de culture sans lequel il n'y aurait pas de continuité du cycle de production de cellules microbiennes de l'inoculum. Et de façon extraordinaire, le nombre de cellules microbiennes inoculées constituant l'inoculum de départ est réduit au 11100e, ce qui représente une économie conséquente en termes de temps et de coût de culture de la souche microbienne. 20 25 30 REVENDICATIONS1) Inoculum solide supporté caractérisé en ce qu'il est constitué d'un agrogranulat superabsorbant à volume variable fonctionnant en minifermenteur naturel continu préchargé en milieu nutritif concentré anhydre favorisant la multiplication continue des microorganismes revivifiés incorporés en faible densité. 2) Inoculum solide selon la revendication 1 caractérisé en ce que les microorganismes sont choisis parmi les champignons mycorhiziens, les rhizobactéries. 3) Inoculum solide selon la revendication 1 caractérisé en ce que les microorganismes sont choisis parmi Azotobacter spp., Acidovorax facilis, Flavobacterium spp., Pseudomonas spp., Rhodococcus rhodochrous, Bacillus subtilis, Bacillus chitinoporus, Bacillus laterosporus, Bacillus thuringiensis, Saccharopolyspora spinosa, Meterhizium anisopliae ou encore Beauvaria bassiana. 4) Inoculum solide selon l'une des revendications 1 à 3 caractérisé en ce que la densité de cellules microbiennes à inoculer dans le support est comprise entre 11500e et 1110e de la quantité recommandée par la norme pour un inoculum liquide de la même souche. 5) Inoculum solide selon l'une des revendications 1 à 3 caractérisé en ce que la densité de cellules microbiennes à inoculer dans le support est comprise entre 11200e et 11100e de la quantité recommandée par la norme pour un inoculum liquide de la même 20 souche. 6) Inoculum solide selon l'une des revendications 1 à 5 caractérisé en ce que le milieu nutritif incorporé dans le support est adapté à la souche de microorganismes à inoculer. 7) Inoculum solide selon l'une des revendications 1 à 6 caractérisé en ce que le 25 milieu nutritif incorporé dans le support contient divers nutriments et facteurs de croissance particulièrement favorables à la souche de microorganismes à inoculer. 8) Inoculum solide selon la revendication 1 caractérisé en ce que l'agrogranulat superabsorbant à volume variable fonctionnant en minifermenteur naturel présente un taux de matière sèche compris entre 92% et 95% en poids. 9) Inoculum solide selon l'une des revendications 1 et 8 caractérisé en ce que ledit agrogranulat a un pouvoir absorbant d'eau ou de solution aqueuse allant jusqu'à 500% en poids. 10) Inoculum solide selon l'une des revendications 1, 8 et 9 caractérisé en ce que ledit agrogranulat est constitué d'une matrice composite plastique biodégradable constituée d'un mélange de biopolymères protéiques d'origine végétale, de biopolymères saccharidiques riches en amidon, hémicelluloses, cellulose et pectines, et de tissus naturels composés de cellules hyalines ou hydrocystes 11) Procédé d'obtention de l'inoculum solide supporté dans un agrogranulat 10 superabsorbant à volume variable fonctionnant en minifermenteur naturel selon l'une des revendications 1 à 10 caractérisé en ce qu'il consiste à : a) incorporer dans le support en agrogranulat superabsorbant à volume variable le milieu nutritif liquide concentré convenant à la souche à inoculer, à un taux compris entre 25% et 500% en poids, mais préférentiellement à un taux adapté 15 aux microorganismes à valeur d'usage fixée ; b) déshydrater le support obtenu en a) entre 40°C et 55°C jusqu'à un taux de matière sèche compris entre 90% et 95% en poids ; e) stériliser le support sec obtenu en b) dans des containers étanches ; d) incorporer la souche microbienne ayant été préalablement cultivée dans le 20 support stérile obtenu en c) en densité microbienne variant entre 1/500e et 1/10e de la quantité recommandée par les normes pour un inoculum liquide de la même souche, mais préférentiellement en densité microbienne comprise entre 1/200e et 1/100e de la quantité recommandée par les normes pour un inoculum liquide de la même souche ; 25 e) déshydrater le support chargé obtenu en d) par étuvage entre 35°C et 40°C pour obtenir un inoculum solide supporté à un taux de matière sèche compris entre 90% et 95% en poids ; f) emballer l'inoculum solide supporté obtenu en e) à l'abri de l'humidité. 12) Procédé selon la revendication 11 caractérisé en ce que l'incorporation dans le 30 support du milieu nutritif liquide concentré ainsi que l'inoculum liquide se fait par aspersion, par pulvérisation ou encore par trempage rapide. 13) Procédé selon l'une des revendications 11 à 12 caractérisé en ce que la concentration du milieu nutritif incorporé dans le support est 2 à 10 fois plus élevée que celle du milieu de culture liquide adapté selon la norme pour la souche microbienne à inoculer. 14) Procédé selon l'une des revendications 11 à 13 caractérisé en ce que le milieu de culture sec concentré contenu dans le support se dissout partiellement par l'eau d'arrosage.