Brevet FR3008712A1 — publié le 20150123

PROCEDE OPTIMISE DE RUPTURE DES PAROIS DE CHLORELLES PAR HOMOGENEISATION A TRES HAUTE PRESSION La présente invention est relative à un procédé optimisé de rupture des parois cellulaires des microalgues du genre Chlorelle, plus particulièrement Chlorelle vulgaris, Chlorelle sorokiniana ou Chlorelle protothecoides à l'échelle industrielle. Présentation de l'état de l'art Il est bien connu de l'homme du métier que les chlorelles sont une source potentielle de nourriture, car elles sont riches en protéines et autres nutriments essentiels. Elles renferment notamment 45% de protéines, 20% de matières grasses, 20% de glucides, 5% de fibres et 10% de minéraux et de vitamines. Pour utiliser efficacement Chlorelle en Alimentation, il est souvent fait recours au « cassage cellulaire » de manière à faciliter sa digestibilité et son taux d'absorption. Ce « cassage cellulaire » des microalgues est bien décrit dans la littérature brevets et non brevets par l'emploi de technologies variées : - physiques (ultrasons, microbilles, chocs thermiques, haute pression...) - chimiques (acides, alcalis, solvants organiques hydrophiles...) enzymatiques (cellulase, lipase...). Cependant, les différentes alternatives mécaniques, chimiques ou enzymatiques sont généralement peu extrapolables à l'échelle industrielle et essentiellement décrites à l'échelle du laboratoire. De plus, si la paroi cellulaire présente une résistance mécanique particulièrement élevée (notamment pour le genre Chlorelle) et si la densité cellulaire dans le milieu est élevé (>100g/L), le choix technologique devient très limité. Lorsque que l'on intègre en plus les problématiques industrielles d'extrapolation (haute capacité, fiabilité, coûts opérationnels, coûts d'investissement...), les alternatives mécaniques réalistes se restreignent essentiellement au broyage par microbilles et à la technologie de haute pression. Les technologies classiques de cassage cellulaire par homogénéisation haute pression, domaine auquel s'adresse la présente invention, sont par exemple décrites dans les demandes de brevet ou brevets CN 102433015 (pour l'extraction de cyanine des algues bleues unicellulaires), CN 101817738 (pour l'extraction de DHA à partir de microorganismes en produisant), US 5,8855,64 (pour l'obtention de compositions oxygénées contenant des phospholipides et du fluorocarbone) ou encore CN 101352249 (pour l'extraction des composants lipidiques et protéiques de biomasses de microalgues). L'homogénéisation à haute pression (dite « HHP »dans la suite de cet exposé), également connue sous le nom homogénéisation à haute pression dynamique, a été proposée à travers le développement d'une nouvelle génération d'homogénéisateurs, capables d'atteindre des pressions de 10-15 fois plus élevé que les machines traditionnelles. Etant donné la nature du matériel cellulaire à « casser », l'HHP conduit à la production d'émulsions, composées essentiellement d'un mélange de débris cellulaires, de liquide aqueux intracellulaire et d'huile. Au début des années 1980, une nouvelle technologie a été proposée pour la production d'émulsions fines grâce la disponibilité d'appareils capables de générer et de gérer de très hautes pressions dans les liquides, des pressions supérieures à 100 MPa et jusqu'à 300 - 500 MPa, ainsi que grâce à la nouvelle conception de la chambre d'homogénéisation. Différents fabricants d'homogénéisateurs haute pression proposent ainsi soit des prototypes, soit de l'équipement à l'échelle industrielle, comme Microfluidics, Stansted Fluid Power, AVP, Avestin ou Niro Soavi. Dans sa conception, l'homogénéisateur de base se compose d'un générateur à haute pression, telle qu'une pompe à déplacement positif couplée à un amplificateur de pression qui force le fluide à travers un ensemble de soupapes d'homogénéisation spécialement conçues. La pressurisation rapide du fluide de traitement (jusqu'à 350 MPa) provoque une augmentation de température de l'ordre de 3°C/100 MPa, tandis que la chute de pression instantanée survenant dans la valve d'homogénéisation induit une augmentation de chaleur plus importante (15 à 20 °C/100 MPa). Une soupape secondaire, où une chute de pression nettement plus faible se produit, peut être placée à côté de la soupape principale afin de perturber les agglomérats éventuellement formés dans la première étape. Etant donné que la température finale peut être élevée, en fonction de la température d'entrée et du niveau de pression de fonctionnement, un refroidissement rapide du fluide de traitement représente une bonne pratique pour préserver les composants thermolabiles du produit traité. De façon remarquable, dans ces opérations à haute pression dynamique, le fluide est exposé à de fortes pressions pendant des durées très courtes (1-10 s). Dans ce laps de temps, le fluide doit s'écouler de l'amplificateur à la soupape de disruption. L'opération de cassage est principalement réglée par le passage du fluide de procédé sous haute pression au travers d'une soupape de décharge à orifice restreint réglable, plutôt que par exposition à haute pression. Quel que soit le type de valve d'homogénéisation, le liquide traité sous haute pression passe à travers une section convergente appelé « l'espace d'homogénéisation », puis se dilate. La pression est commandée par un actionneur, ce qui permet de régler la force exercée sur la soupape. Cette technologie d'HHP demande donc à être finement contrôlée pour être efficace, et d'être adaptée en fonction des objectifs visés. C'est ainsi qu'à côté de l'utilisation de l'HHP pour rompre la paroi des cellules, par exemple de microalgues afin de les rendre plus digestibles, ou pour en libérer le contenu d'intérêt, une autre application concerne la décontamination microbienne. Dans ce domaine, la société Stansted Fluid Power Ltd a introduit une amélioration significative à la conception de la valve de l'homogénéisateur, qui permet au moyen de l'augmentation du niveau de pression du fluide jusqu'à 350MPa, de stériliser des produits in situ par la modification de la texture des émulsions ou des biopolymères. Il résulte de tout ce qui précède que la technologie HHP parait prometteuse lorsque l'on vise une extrapolation industrielle efficace de cette technologie de rupture cellulaire. Cependant, lorsqu'il faut l'appliquer au cassage de cellules de microalgues en général, et de chlorelles en particulier, de nombreuses problématiques se posent. Une première problématique relative au traitement de la biomasse de Chlorelles par HHP est liée à la nature de l'émulsion produite. La stabilité de cette émulsion va dépendre, entre autres, des molécules se trouvant à l'interface ainsi que du travail d'émulsification fourni par la technologie d'homogénéisation. La stabilité de celle-ci est généralement indispensable pour permettre son utilisation dans de multiples applications alimentaires. Une seconde problématique est relative au séchage de ladite émulsion. En effet, lorsque cette émulsion est séchée (par exemple, par atomisation), la finesse de l'émulsion va conditionner les propriétés d'écoulement de la poudre, d'encapsulation des lipides, de stabilité face à l'oxydation. Le produit fini sera d'autant plus facile à mettre en oeuvre selon les applications visées. Selon la matrice, l'énergie nécessaire à l'émulsification peut être très importante pour parvenir à générer une émulsion suffisamment fine et stable. Une troisième problématique est la qualité microbienne à respecter lors du traitement de raffinage / purification d'une biomasse humide telle qu'un moût de fermentation de Chlorelles. Dans le cas où le protocole de raffinage / purification est effectué dans un environnement non stérile, des précautions particulières sont à prendre pour limiter le développement d'une contamination microbienne (par exemple procédé réfrigéré, limitation de la durée des phases de stockage intermédiaires, etc....). Cependant, ces moyens de prévention peuvent être insuffisants et une étape de pasteurisation / stérilisation peut s'avérer nécessaire parmi les dernières étapes générant le produit fini. Face à ces trois problématiques, l'homme du métier sera contraint d'avoir recours à un procédé lourd avec successivement les étapes de broyage, de pasteurisation/stérilisation et d'homogénéisation avec les technologies adéquates. Objet de l'invention Pour remédier à ces contraintes, la société Demanderesse a choisi de conduire ses travaux sur la maîtrise de la technologie de très-haute (ou ultra-haute) pression afin de parvenir à effectuer ces trois actions simultanément et ainsi simplifier significativement l'enchainement des opérations. Plus particulièrement, la société Demanderesse a décidé de tirer profit de deux des différents domaines d'application de la technologie d'HHP, classiquement considérés séparément par l'homme du métier. Le premier domaine se rapporte aux changements physiques qui peuvent être provoqués par la technologie HHP, tels que la réduction de la taille et le rétrécissement de la distribution de taille des particules, des gouttelettes ou des micelles de suspensions ou d'émulsions, généralement décrits et utilisés pour la préparation ou la stabilisation d'émulsions ou de préparation de type nanoparticules et nano-suspensions, ou en vue d'obtenir de changements de viscosité et de texture. Le deuxième domaine est axé sur l'effet de « perturbation » cellulaire induite par l'HHP, qui est généralement appliqué à la récupération de matériel intracellulaire dans l'industrie biotechnologique et pharmaceutique, ou généralement l'HHP est utilisé pour réduire la charge microbienne dans les produits alimentaires et pharmaceutiques. Cette conduite de l'HHP permet ainsi de l'utiliser efficacement seule pour casser les cellules de microalgues, en tirant profit simultanément de toutes les fonctionnalités qu'offre cette technologie, afin de gérer les problèmes afférents à : - la production d'une émulsion, - le séchage de ladite émulsion - la présence de contaminants microbiens potentiels lors des étapes de raffinage / purification de la biomasse lysée. Elle permet également de s'affranchir de la nécessité de coupler l'HHP avec d'autres technologies, tel que décrit dans l'état de l'art (comme celle mettant en oeuvre des enzymes spécifiques de dégradation des parois cellulaires de microalgues) pour casser efficacement les cellules de microalgues. Ainsi, la présente invention est relative à un procédé de cassage de paroi cellulaire, à l'échelle industrielle, de cellules de microalgues du genre Chlorella, le cassage de paroi cellulaire étant conduit par homogénéisation à haute pression, caractérisé en ce que l'homogénéisation haute pression est conduite : - en au moins une passe à une pression entre 300 et 400 MPa, ou - en au moins deux passes successives à une pression comprise entre 150 et 300 MPa, et - à une température d'alimentation comprise entre 4 et 40°C, de manière à garantir un taux de cassage de paroi cellulaire de plus de 80%, une granulométrie de l'émulsion produite inférieure à 1 pm et une charge microbienne de moins de 10 germes totaux par g d'émulsion. De préférence, les microalgues du genre Chlorella sont choisies dans le groupe constitué de Chlorella vulgaris, Chlorella sorokiniana et Chlorella protothecoides, et sont plus particulièrement Chlorella protothecoides. De préférence, la biomasse de microalgues comprend au moins 10 % en poids sec de lipides, de préférence au moins 20, 30, 40, 50 ou 60 % en poids sec de lipides. Dans un mode de réalisation particulier, la température d'alimentation est comprise entre 20 et 40°C. Dans un mode de réalisation préféré, l'homogénéisation haute pression est conduite à une pression entre 300 et 400 MPa en une seule passe. Dans un autre mode de réalisation préféré, l'homogénéisation haute pression est conduite à une pression entre 150 et 300 MPa, de préférence entre 150 et 250 MPa, en deux, trois, quatre ou cinq passes successives. En particulier, l'homogénéisation haute pression est conduite à une pression comprise entre 150 et 250 MPa en deux passes successives. Les pressions de deux passes successives peuvent être identiques ou différentes. La présente invention est également relative à un procédé de préparation d'une farine de microalgues, de préférence du genre Chlorella, en particulier Chlorella protothecoides, comprenant la production d'une biomasse de microalgues, le cassage de paroi cellulaire par un procédé selon la présente invention, et le séchage de la biomasse, en particulier par atomisation. Elle est en outre relative à la farine de microalgues obtenue par le procédé. Elle concerne enfin l'utilisation du procédé de cassage de paroi cellulaire de microalgues selon la présente invention pour la préparation d'une farine de microalgues telles que décrites ci-dessus. Description détaillée de l'invention La société Demanderesse a trouvé que l'exploitation raisonné de la technologie d'homogénéisation de très-haute (ou ultra-haute) pression pour rompre la paroi de microalgues du genre Chlorella, permet de parvenir à la qualité de broyage souhaitée. Cette exploitation raisonnée s'entend de l'étude et l'optimisation de chacun des paramètres de conduite de l'HHP adaptées à la microalgue modèle, ici Chlorella protothecoides. Les microalgues préférées de l'invention peuvent croître en conditions hétérotrophiques (sur sucres comme source carbonée et en l'absence de lumière). La société Demanderesse recommande de choisir des microalgues du genre Chlorella riches en lipides. Les microalgues utilisées peuvent être choisies, et de manière non-exhaustive, parmi les Chlorella protothecoides, Chlorella kessleri, Chlorella minutissima, Chlorella sp., Chlorella sorokiniama, Chlorella luteoviridis, Chlorella vulgaris, Chlorella reisiglii, Chlorella ellipsoidea, Chlorella saccarophila, Parachlorella kessleri, Parachiorella Prototheca stagnora et Prototheca moriformis. De manière préférée, les microalgues utilisées selon l'invention appartiennent à l'espèce Chlorella protothecoides. Les microalgues sont cultivées en milieu liquide pour produire la biomasse en tant que telle. Selon l'invention, les microalgues sont cultivées dans un milieu contenant une source de carbone et une source d'azote en absence de lumière (conditions hétérotrophiques). Les milieux de croissance solides et liquides sont généralement disponibles dans la littérature, et les recommandations pour la préparation des milieux particuliers qui conviennent à une grande variété de souches de microorganismes peuvent être trouvées, par exemple, en ligne à www.utex.org/, un site maintenu par l'Université du Texas à Austin pour sa collection de culture d'algues (UTEX). La production de biomasse est réalisée en fermenteurs (ou bioréacteurs). Les exemples spécifiques de bioréacteurs, les conditions de culture, et la croissance hétérotrophe et les méthodes de propagation peuvent être combinés de toute manière appropriée pour améliorer l'efficacité de la croissance microalgale et des lipides. De préférence, la biomasse à laquelle est appliqué le procédé d'homogénéisation de très-haute pression à une matière sèche comprise entre 15 et 50 % en poids sec. En particulier, la teneur en matière sèche peut être comprise entre 25 et 45 %, de préférence entre 35 et 45 %. De préférence, la biomasse est lavée et concentrée préalablement à l'application du procédé d'homogénéisation de très-haute pression. En outre, la teneur en lipides de la biomasse de microalgues est de préférence d'au minimum au moins 10, 20, 30, 40, 50 ou 60 % en poids sec, par exemple entre 20 et 5 80 % ou entre 30 et 70 %. Evaluation du taux de cassage cellulaire en fonction de la pression appliquée, du nombre de passage et de la température du fluide d'alimentation Comme il sera exemplifié ci-après, on vérifie que la pression appliquée sur le 10 fluide et le nombre de passes ont un impact significatif sur l'efficacité du cassage cellulaire. Il est alors recommandé, selon le procédé conforme à l'invention, de travailler : à une pression entre 300 et 400 MPa en au moins une passe et de préférence en une seule passe, ou 15 à une pression comprise entre 150 et 300 MPa, de préférence entre 150 et 250 MPa, en au moins deux passes successives, et à une température d'alimentation comprise entre 4 et 40°C Avec ce procédé, le pourcentage de cassage des parois cellulaires est de plus de 80, 85 ou 90 %. Par ailleurs, la charge microbienne est significativement diminuée par 20 ce procédé. Notamment, elle est de moins de 10 germes totaux par g d'émulsion. La température d'alimentation peut être comprise entre 20 et 40°C. De manière alternative, elle peut être comprise entre 4 et 10°C, entre 10 et 20°C, entre 20 et 30°C ou entre 30 et 40 °C. 25 Evaluation de la capacité de la technologie HHP à générer une émulsion de fines particules Comme il sera montré ci-après, les observations en microscopie optique, avec ou sans coloration, montrent que la technologie de cassage par HHP permet de générer une émulsion plus fine que celle produite par une méthode de cassage cellulaire plus 30 classique, en l'occurrence par broyage à billes. La fraction émulsion issue du cassage cellulaire HHP est caractérisée par une très faible granulométrie alors que celle issue du broyage à billes est caractérisée par une granulométrie plus grossière de 1 à plus de 40 pm. En effet, avec le procédé selon la présente invention, une population de granulométrie inférieure à 1 pm est 35 significativement présente, et peut même être majoritaire dans l'émulsion. Par sa caractéristique granulométrique, l'émulsion obtenue par homogénéisation haute pression est donc beaucoup plus stable que celle issue du broyage à billes. Bien qu'en utilisant de très haute pression, notamment au moins 300 MPa, il a été démontré qu'un seul passage était suffisant pour le procédé de cassage des cellules de microalgues, il a été également démontré par la société Demanderesse qu'une homogénéisation à très haute pression conduira à une émulsion d'autant plus stabilisée que l'on la produira en plusieurs passages successifs. Ainsi, le procédé peut comprendre deux, trois, quatre ou cinq passages successifs. Cependant, dans un intérêt industriel, il est préférable de limiter le nombre de passages. Ainsi, dans un mode de réalisation préféré, deux passages successifs seront utilisés. La pression utilisée pour chaque passage peut varier ou être constante. Le procédé peut être mis en oeuvre sur tout homogénéisateurs haute pression disponibles, par exemple ceux proposés par Microfluidics, Stansted Fluid Power, AVP, Avestin ou Niro Soavi. La présente invention est également relative à un procédé de préparation d'une farine de microalgues telles que décrites ci-dessus, comprenant la production d'une biomasse de microalgues, le cassage de paroi cellulaire par un procédé selon la présente invention, et le séchage de la biomasse, en particulier par atomisation. Préalablement au cassage de paroi cellulaire, il est possible de laver la biomasse et/ou de la concentrer. La présente invention est en outre relative à la farine de microalgues obtenue par le procédé ci-dessus décrit. Plus généralement, la présente invention concerne une méthode de préparation de farine de microalgues telles que décrites ci-dessus mettant en oeuvre le procédé de cassage de paroi cellulaire de microalgues selon la présente invention. Elle concerne donc l'utilisation du procédé de cassage de paroi cellulaire de microalgues selon la présente invention pour la préparation d'une farine de microalgues telles que décrites ci- dessus. Cette farine de microalgues est utile dans le domaine alimentaire. Ainsi la présente invention est relative à l'utilisation de la farine selon la présente invention ou obtenue par le procédé selon la présente invention dans les domaines alimentaires. Notamment, elle est relative à une méthode de préparation d'une composition alimentaire comprenant l'ajout d'une telle farine de microalgues à des ingrédients de la composition alimentaire ou à la composition alimentaire. De telles utilisations sont par exemple décrites dans les demandes de brevet W02010/045368, W02010/120923 ou US2010/0297296. Par « échelle industrielle » est de préférence entendu un procédé dans lequel : le volume de la chambre de broyage ou cassage est supérieur ou égal à 100 litres, de préférence à 500 litres ; et/ou le débit est supérieur à 1 m3/h ; et/ou un batch de 1 à 200 m3. L'invention sera mieux comprise à l'aide des exemples qui suivent, lesquels se veulent illustratifs et non limitatifs. EXEMPLES Exemple 1. Préparation d'une biomasse de microalgues Chlorella protothecoides et présentation des outils mis en oeuvre Le protocole de fermentation est adapté de celui décrit en toute généralité dans la demande de brevet WO 2010/120923. Le fermenteur de production est inoculé avec une préculture de Chlorelle protothecoides. Le volume après inoculation atteint 9 000 L. La source de carbone employée est un sirop de glucose 55 % p/p stérilisé par application d'un barème temps/température. La fermentation est un « fed-batch » durant lequel le débit de glucose est ajusté de sorte à maintenir une concentration de glucose résiduel de 3 à 10 g/L. La durée du fermenteur de production est de 4 à 5 jours. En fin de fermentation, la concentration cellulaire atteint 185 g/L. Pendant la phase d'alimentation en glucose, la teneur en azote dans le milieu de culture est limitée pour permettre l'accumulation de lipides à hauteur de 50 % (en poids de biomasse). La température de fermentation est maintenue à 28°C. Le pH de fermentation avant inoculation est ajusté à 6,8 puis est régulé sur cette même valeur pendant la fermentation. L'oxygène dissous est maintenu à un minimum de 30 % en contrôlant l'aération, la contre pression et l'agitation du fermenteur. Le moût de fermentation est traité thermiquement sur une zone HTST avec un barème de 1 min à 75°C et refroidi à 6°C. La biomasse est alors lavée à l'eau potable décarbonatée avec un ratio de dilution de 6 pour 1 (eau/moût) et concentrée à 250 g/L (25% DCW poids sec en cellules « Dry Cell Weight ») par centrifugation en utilisant une Alfa Laval FEUX 510. Mesure du taux de cassage cellulaire La mesure du taux de broyage est effectuée par comptage microscopique des cellules résiduelles après broyage relativement à l'échantillon initial de référence. Les échantillons sont dilués au 1/800. L'analyse est effectuée par comptage sur cellule de Malassez selon la méthode d'utilisation standard au microscope optique au grossissement 10x40. Le taux de cassage cellulaire est déterminé par calcul du pourcentage de cellules résiduelles par rapport à l'échantillon initial de référence. Exemple 2. Mesure de l'impact des valeurs de pression, du nombre de passages et de la température sur l'efficacité du cassage de Chorella protothecoides par HHP On teste l'impact de la valeur de la pression appliquée (100 MPa et 150 MPa), et le nombre de passes, sur l'efficacité de broyage, exprimé en % de taux de cassage, de la biomasse préparée selon l'exemple 1. Un système d'homogénéisation haute pression Rannie LAB 10.51VH homogeniser (SPX) avec une valve SEO est utilisé à une pression dynamique allant jusqu'à 150 MPa. La biomasse est introduite à un débit d'environ 60L/h. La Figure 1 montre clairement que plus la pression et le nombre de passes est élevé, meilleure sera l'efficacité de cassage. Une seconde série d'essais est réalisée en un seul passage, mais à différentes pression afin d'évaluer l'efficacité du cassage cellulaire selon la pression appliquée. Pour ce faire, un système continu d'ultra haute pression Stansted Fluid Power Ltd. 11300 (15 kW) est utilisé à une pression dynamique allant jusqu'à 380 MPa. Le produit est alimenté de façon continue à un débit d'environ 100 1/h en une seule passe. Comme le montre la Figure 2, le cassage des cellules est visible à partir de 100 MPa et commence à être significatif à partir de 150 MPa. Le taux de cassage cellulaire franchit 70% à 300 Mpa et atteint un taux au-delà de 80% à la pression maximale atteignable par la technologie. Une troisième série d'essais est réalisée en effectuant deux passes successives mais en limitant la pression à 250 Mpa. Comme le montre la Figure 3, dans cette configuration, en cumulant deux passes successives à des pressions supérieures à 200 MPa, des taux de cassage cellulaire de l'ordre de 90% sont obtenus. Dans cette configuration, il est possible de limiter la pression appliqué sur la valve d'homogénéisation à une valeur inférieure à 250 MPa. Ce schéma permet de limiter les phénomènes d'usure de la valve d'homogénéisation. L'impact de la température d'entrée sur l'efficacité du cassage cellulaire est évalué dans une autre série d'essais L'augmentation de la température d'alimentation du produit agit favorablement sur l'efficacité du cassage cellulaire (plus de 5% de gain) - Cf. Figure n°4. Cependant, l'exothermie du processus d'homogénéisation haute pression génère une augmentation de température très importante pouvant constituer une contrainte selon la sensibilité du produit en sortie, la température d'entrée est donc à limiter selon le seuil maximum tolérable en sortie. En conclusion : il est recommandé, selon un mode préféré du procédé conforme à l'invention, de travailler : à une pression entre 350 et 400 MPa en une seule passe, ou à une pression comprise entre 200 et 250 MPa en deux passes successives, à une température d'alimentation comprise entre 4 et 40°C Exemple 3. Qualité de l'émulsion générée par le cassage HHP La composition de la biomasse issue de la fermentation selon l'exemple 1 est caractérisée par une fraction lipidique majoritaire (env. 50%/sec). Après cassage cellulaire, une émulsion (phase aqueuse avec débris cellulaires / huile) est ainsi générée. La stabilité de cette émulsion est conditionnée par la finesse des globules lipidiques. L'homogénéisation a pour but de minimiser le diamètre des globules lipidiques et en même temps de le rendre aussi uniforme que possible; il en résulte alors une amélioration de la stabilité et un accroissement de la viscosité du milieu. La technologie d'homogénéisation haute pression est ainsi évaluée, par rapport à la technologie de broyage à billes, sur son potentiel d'homogénéisation et ainsi de stabilisation de l'émulsion générée au-delà du simple objectif de cassage cellulaire. La biomasse est alors broyée avec un broyeur à billes NETZSCH Labstar en utilisant des billes de silicate de zirconium de 0,5mm de diamètre (vitesse périphérique : 12 m/s, 90% de taux de remplissage, débit : 6 kg/h) Une évaluation au microscope optique est ainsi réalisée afin de comparer l'émulsion selon le procédé employé. Les Figures 5 et 6 permettent de visualiser la différence de taille de l'émulsion générée par les deux technologies (HHP menée en une passe, à 350 Mpa et Broyage à billes). La Figure 6 met en évidence le fait que le broyage à billes conduit à produire une émulsion beaucoup plus grossière avec une taille de globules plus importante et plus hétérogène que celle obtenue après traitement HHP (Figure 5), l'émulsion générée est visuellement beaucoup plus fine. Afin de caractériser plus précisément, le potentiel d'émulsification de la technologie HHP en regard de ce qui est obtenu par broyage à billes, les émulsions générées sont analysées sur granulométrie laser (Laser Mastersizer 2000E - Malvern) selon les spécifications du constructeur. La Figure 7 permet de caractériser l'efficacité des méthodes employées dans la génération d'une émulsion fine et potentiellement stable. Après cassage cellulaire, dans les deux cas, une population bimodale est observée par rapport à la biomasse initiale qui présente quant à elle une population monomodale, d'un diamètre de cellules entières réparti entre 1 et 10 pm. Cependant, dans le cas du broyage à billes, conformément aux observations microscopiques, l'émulsion est grossière, répartie entre 1 et 100 pm. A savoir que la 1ère population, entre 1 et 30 pm est constituée de cellules entières résiduelles ainsi que de globules lipidiques de taille Globalement, l'émulsion issue du broyage à billes est donc grossière et très hétérogène. Dans le cas du cassage cellulaire par homogénéisation haute pression, c'est la 2ème population, répartie entre 1 et 10 pm, qui est exclusivement constituée de cellules entières résiduelles. La fraction émulsion issue du cassage cellulaire est caractérisée comme 1ère population, par une très faible granulométrie, inférieure à 1 pm. Par sa caractéristique granulométrique, l'émulsion obtenue par homogénéisation haute pression est donc beaucoup plus stable que celle issue du broyage à billes. La Figure 8 met en ensuite évidence l'impact de la pression d'homogénéisation sur la répartition granulométrique de l'émulsion. On note en effet que le taux de cellules entières résiduelles est d'autant plus faible que la pression appliquée est plus élevée, ce qui explique la réduction de l'amplitude de la population correspondante en 1 et 10 pm. L'amplitude de la fraction correspondant aux globules lipidiques émulsionnés augmente alors avec l'augmentation de la pression, à laquelle s'ajoute une réduction de la répartition granulométrique moyenne. Des essais complémentaires, illustrés par la Figure 9, ont visé à évaluer le système mettant en oeuvre un ou deux passages à haute pression (250 MPa). On note ainsi que l'influence de la pression est d'autant plus importante quand le procédé d'homogénéisation est constitué de deux passages successifs à très haute pression qu'un seul passage (générant ainsi une pression cumulée encore plus importante que la pression maximale atteignable en monopassage). Par ces configurations d'homogénéisation à très haute pression, l'émulsion lipidique issue du cassage cellulaire est fortement stabilisée, ce qui facilite la suite des opérations de traitement de cette émulsion ainsi que sa mise en oeuvre en applications. Exemple 4. Réduction de la charge microbienne Le traitement à très haute pression est évalué pour son potentiel de réduction de la contamination de la biomasse avant homogénéisation. Le cisaillement engendré par la pression sur la valve de l'homogénéisateur, associée à la montée de la température, réduit significativement la charge microbienne de la biomasse et ainsi génère une force stérilisatrice. Ainsi, le potentiel de décontamination est évalué à différent barème de pression sur le système continu d'ultra haute pression Stansted Fluid Power Ltd. 11300 (15 kW). Le tableau suivant présente les résultats de charge microbienne obtenus dans ces conditions. Point HHP HHP initial 250 MPa 350 MPa T°C sortie 8 72 91 germes totaux 42000 Description des Figures FIGURE 1 : Evaluation du taux de cassage selon la pression (100 MPa / 150 MPa) et le nombre de passes. FIGURE 2 : Evaluation du taux de cassage selon la pression en une seule passe FIGURE 3 : Evaluation du taux de cassage selon la pression en deux passes successives FIGURE 4 : Evaluation du taux de cassage en fonction de la température du produit à l'alimentation FIGURE 5 : Observation microscopique de l'émulsion issue du broyage à billes (Grossissement x760, échelle : barre = 20 pm). 1 - Lumière blanche 2 - coloration au bleu de Nil et lumière fluorescente FIGURE 6 : Observation microscopique de l'émulsion issu du cassage HHP à 350 Mpa (Grossissement x760, échelle : barre = 20 pm). 1 - Lumière blanche 2 - coloration au bleu de Nil et lumière fluorescente FIGURE 7 : Analyse granulométrique de l'émulsion produite par broyage à billes ou par HHP relativement à la biomasse initiale FIGURE 8 : Analyse granulométrique de l'émulsion produite par HHP selon la pression appliquée FIGURE 9 : Analyse granulométrique de l'émulsion produite par HHP en 1 ou 2 passages à 250 MPa REVENDICATIONS1. Procédé de cassage de paroi cellulaire, à l'échelle industrielle, de cellules de microalgues du genre Chlorelle, le cassage de paroi cellulaire étant conduit par homogénéisation à haute pression, caractérisé en ce que l'homogénéisation haute pression est conduite : - en au moins une passe à une pression entre 300 et 400 MPa, ou - en au moins deux passes successives à une pression comprise entre 150 et 300 MPa, et - à une température d'alimentation comprise entre 4 et 40°C, de manière à garantir un taux de cassage de paroi cellulaire de plus de 80%, une granulométrie de l'émulsion produite inférieure à 1 pm et une charge microbienne de moins de 10 germes totaux par g d'émulsion. 2. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que les microalgues du genre Chlorella sont choisies dans le groupe constitué de Chlorelle vulgaris, Chlorelle sorokiniana et Chlorelle protothecoides, et sont plus particulièrement Chlorelle protothecoides. 3. Procédé selon la revendication 1 ou 2, caractérisé en ce que l'homogénéisation haute pression est conduite à une pression entre 300 et 400 MPa en une seule passe. 4. Procédé selon la revendication 1 ou 2, caractérisé en ce que l'homogénéisation haute pression est conduite à une pression comprise entre 150 et 250 MPa en deux, trois, quatre ou cinq passes successives. 5. Procédé selon la revendication 4, caractérisé en ce que l'homogénéisation haute pression est conduite à une pression comprise entre 150 et 250 MPa en deux passes successives. 6. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 2 et 4 à 5, caractérisé en ce que les pressions de deux passes successives peuvent être identiques ou différentes. 7. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1-6, caractérisé en ce que la température d'alimentation est comprise entre 20 et 40°C. 8. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1-7, caractérisé en ce que la biomasse de microalgues comprend au moins 10 % en poids sec de lipides, de préférence au moins 20, 30, 40, 50 ou 60 % en poids sec de lipides. 9. Procédé de préparation d'une farine de microalgues comprenant la production d'une biomasse de microalgues, le cassage de paroi cellulaire par un procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 8, et le séchage de la biomasse, en particulier par atomisation. 10. Farine de microalgues obtenue par le procédé selon la revendication 9. 11. Utilisation du procédé de cassage de paroi cellulaire de microalgues selon l'une quelconque des revendications 1 à 8 pour la préparation d'une farine de 15 microalgues. 10