Brevet FR3003870A1 — publié le 20141003

LIGNEES DE CELLULES SOUCHES HUMAINES ET MURINES : MODELES DE PRECURSEURS DE CELLULES ENDOTHELIALES DESCRIPTION Domaine technique La présente invention se rapporte à des cellules isolées humaines précurseurs des cellules endothéliales autres que les cellules souches embryonnaires, à des cellules isolées murines précurseurs des cellules endothéliales représentant un modèle de différentiation dans les deux cas. La présente invention se rapporte également à des procédés les utilisant. En particulier, la présente invention se rapporte à des lignées cellulaires établies de cellules isolées humaines précurseurs de cellules endothéliales autres que les cellules souches embryonnaires et à des lignées cellulaires établies de cellules isolées murines précurseurs de cellules endothéliales. La présente invention trouve des applications dans le domaine médical et/ou vétérinaire, en particulier dans le domaine thérapeutique, et/ou dans le domaine de l'étude des mécanismes cellulaires, par exemple, des mécanismes cellulaires de réparation, d'angiogenèse ou de ciblage. Dans la description ci-dessous, les références entre crochets ([ ]) renvoient à la liste des références présentées à la fin du texte. Etat de la technique Les cellules précurseurs de cellules endothéliales font l'objet depuis plusieurs années de nombreuses études et publications scientifiques. En effet, depuis l'identification des cellules souches, plusieurs études ont été réalisées afin d'identifier les marqueurs spécifiques des cellules souches, ainsi que les différents éléments susceptibles d'induire une différentiation et/ou une spécialisation de ces cellules. Les cellules souches peuvent, avant différentiation, être à l'origine de l'ensemble des cellules. Elles peuvent se différencier et devenir, par exemple des précurseurs de cellules spécialisées. Un des types de cellules souches les plus connues sont les cellules souches hématopoïétiques. Ces cellules ont été très étudiées du fait de leur implication potentielle dans des maladies comme la leucémie myéloïde aigue, la croissance tumorale telle que présentée dans les documents Arbab AS, Pandit SD, Anderson SA, et al. « Magnetic resonance imaging and confocal microscopy studies of magnetically labeled endothelial progenitor cells trafficking to sites of tumor angiogenesis. » Stem Cells. 2006;24:671-678 [1] ; de Jonge-Peeters SD, Kuipers F, de Vries EG, Vellenga E. « ABC transporter expression in hematopoietic stem cells and the role in AML drug resistance. » Crit Rev Oncol Hematol. 2007 Jun; 62(3):214-26. Epub 2007 Mar 23. [2] ; Slayton WB, Li XM, Butler J, Guthrie SM, Jorgensen ML, Wingard JR, Scott EW. « The role of the donor in the repair of the marrow vascular niche following hematopoietic stem cell transplant. » Stem Cells. 2007 Nov;25(11):2945-55 [3]. Un des principaux objectifs de ces études a été d'identifier les différents précurseurs cellulaires, par exemple des précurseurs de cellules endothéliales. Différentes études ont mis en avant des cellules avec différents marqueurs pouvant induire la formation de cellules endothéliales. Les cellules progénitrices endothéliales (EPCs) peuvent être trouvées dans plusieurs tissus ainsi que dans la circulation sanguine comme le montre le document Dome B, Timar J, Ladanyi A, et al. « Circulating endothelial cells, bone marrow-derived endothelial progenitor cells and proangiogenic hematopoietic cells in cancer: From biology to therapy. » Crit Rev Oncol Hematol. 2009;69:108-1241 [4]. Ces cellules sont dotées de la capacité à trouver activement les sites où il y a eu des dommages endothéliaux, d'adhérer à la surface endommagée et de se différencier en cellules endothéliales de manière à reconstituer l'intégrité vasculaire, les documents suivants présentent ces différentes actions Yamahara K, ltoh H. « Potential use of endothélial progenitor cells for regeneration of the vasculature. » Ther Adv Cardiovasc Dis. 2009;3:17-27. [5] ; Suh W, Kim KL, Kim JM, et al. « Transplantation of endothelial progenitor cellsaccelerates dermal wound healing with increased recruitment of monocytes/macrophages and neovascularization. » Stem Cells. 2005;23:1571-1578. [6] ; Slayton WB, Li XM, Butler J, et al. « The role of the donor in the repair of the marrow vascular niche following hematopoietic stem cell transplant. » Stem Cells.2007;25:2945-2955 (7]. Cet aspect de ciblage est particulièrement important pour la réparation de tissus, par exemple du tissu myocardique endommagé après un infarctus 10 mais également des processus pathologiques tels que la croissance tumorale ou la rétinopathie Les cellules précurseurs de cellules endothéliales ont été mises en évidence il y a plus de dix ans, cependant leur identification, leur caractérisation et leur potentiel de différentiation réel sont encore 15 controversés. Un des problèmes principaux pour l'identification des cellules précurseurs de cellules endothéliales provient de l'absence de marqueurs spécifiques et du manque de critères stricts pour les définir, ainsi que leurs fonctions. 20 Il n'existe pas actuellement dans l'art, de lignées cellulaires établies pour les cellules précurseurs de cellules endothéliales. Ainsi, aucune lignée cellulaire de cellules précurseurs de cellules endothéliales n'est disponible, quelque soit l'espèce d'origine. Des progéniteurs de cellules endothéliales ou angioblastes putatifs 25 ont été pour la première fois isolés du sang périphérique humain par sélection sur billes magnétiques en se basant sur l'expression sur la surface cellulaire de l'antigène CD347. In vitro, ces cellules ont été capables de se différencier en cellules endothéliales. Dans les modèles animaux de l'ischémie, les cellules précurseurs de cellules endothéliales 30 sont incorporées dans les sites d'angiogenèse active, tel que présenté dans le document Shi Q, Rafii S, Wu MH, et al. « Evidence for circulating bone marrow-derived endothelial cells. » Blood. 1998;92:362-367 [8]. L'identification des cellules précurseurs de cellules endothéliales est très difficile car il s'agit d'une population rare à la fois dans la moelle osseuse et dans la circulation sanguine. Afin de procéder à la séparation de ces cellules, une sélection a été faite, dans l'art, via l'expression à la surface de marqueurs putatifs des cellules précurseurs de cellules endothéliales. Par exemple, une combinaison des marqueurs CD133 et/ou CD34 et parfois des marqueurs spécifiques des cellules endothéliales tels que VEGFR-2 (CD309), VE- Cadhérine (CD144) et la molécule d'adhésion de cellule de mélanome (MCAM « melanoma cell adhesion molecule », CD146) ont été utilisés pour séparer les cellules souches et les précurseurs cellulaires comme décrits dans Lin Y, Weisdorf DJ, Solovey A, et al. « Origins of circulating endothelial cells and endothelial outgrowth from blood. » J Clin Invest. 2000;105:71-77 [9] ; Peichev M, Naiyer AJ, Pereira D, et al. « Expression of VEGFR-2 and AC133 by circulating human CD34(+) cells identifies a population of functional endothelial precursors. » Blood. 2000;95:952-958. [1 0] . Les cellules précurseurs de cellules endothéliales étaient alors propagées dans diverses conditions et caractérisées par des méthodes in vitro et/ou in vivo qui menaient à des résultats contradictoires. Après l'étape de séparation, plusieurs marqueurs (CD45, CD13, CD31, CD105, CD144, CD202b, Ulex Agglutinin-1 (UEA-1)) étaient habituellement évalués afin de caractériser les populations de cellules obtenues et de discriminer les EPCs putatifs des cellules souches hématopoïétiques (HSCs). Les lignées endothéliales et hématopoïétiques ayant toutes les deux pour origine un progéniteur commun : l'hémangioblaste, et plus les progéniteurs sont proches, plus leurs similarités sont importantes et donc plus la distinction entre les lignées sera difficile. Récemment, l'antigène leucocytaire commun CD45 a été suggéré comme marqueur pour aider à distinguer les lignées hématopoïétiques et endothéliales, puisqu'il n'est pas exprimé dans les hémangioblastes embryonnaires et est acquis durant la différentiation uniquement par les cellules de la lignée hématopoïétique. Il a également été démontré que chez les adultes, uniquement les cellules CD34+ CD45- étaient capables de se différencier vers les cellules précurseurs de cellules endothéliales tandis que les cellules CD34+ CD45+ se différencient plutôt en cellules de type EC exprimant le marqueur monocytique CD14+ additionnel. 10 Par ailleurs, les cellules progénitrices qui ont les marqueurs suivants : CD34+AC133+ et VEGFR2+ ne sont pas des cellules précurseurs de cellules endothéliales mais des cellules précurseurs de cellules hématopoïétiques comme indiqué dans Case J, Mead LE, Bessler WK, Prater D, White HA, Saadatzadeh MR, Bhavsar JR, Yoder MC, Haneline 15 LS, Ingram DA « Human CD34+AC133+VEGFR-2+ cells are not endothelial progenitor cells but distinct, primitive hematopoietic progenitors. » Exp Hematol. 2007 Oct;35(10):1479-80 [11]. Il existe donc clairement des doutes concernant les marqueurs des cellules précurseurs de cellules endothéliales et un réel besoin d'identifier 20 et d'isoler des cellules précurseurs des cellules endothéliales et qui soient utilisables en thérapie. Par ailleurs, tout comme les cellules souches hématopoïétiques, les précurseurs de cellules endothéliales sont connus pour leurs contributions 25 à la génération de vaisseaux chez les adultes et la modulation de la vascularisation postnatale. Ces cellules sont également connues pour leur rôle dans la croissance des tumeurs via la génération de nouveaux vaisseaux. En effet, des études ont montré, via l'utilisation de dispositifs particuliers, que des cellules précurseurs pouvaient être recrutées au 30 niveau de tumeurs et/ou de lésions tissulaires afin de produire des vaisseaux permettant ainsi la croissance de ces tumeurs et/ou la participation à la régénération des tissus lésés comme décrit dans Arbab AS, Pandit SD, Anderson SA et al. [1] ; Asahara T, Murohara T, Sullivan A, Silver M, van der Zee R, Li T, Witzenbichler B, Schatteman G, Isner JM. « Isolation of putative progenitor endothelial cells for angiogenesis. » Science. 1997 Feb 14;275(5302):964-7 [12]. Il n'existe cependant pas dans l'état de la technique de « modèle » de lignée cellulaire précurseur de cellule endothéliale. Il existe un réel besoin de trouver au moins un modèle/lignée cellulaire établie palliant les défauts, inconvénients et obstacles de l'art antérieur, en particulier des lignées cellulaires permettant d'étudier les mécanismes cellulaires, par exemple ceux impliqués dans la génération de vaisseaux, des procédés permettant d'identifier des molécules agissant sur l'adressage des cellules, la formation de nouveaux vaisseaux et permettant de ainsi maîtriser, le mode de recrutement et les molécules impliquées et/ou inhibant ce recrutement de cellules et/ou la formation des vaisseaux, permettant d'autre part de réduire les coûts et d'améliorer les traitements de pathologies impliquant les cellules précurseurs de cellules endothéliales. Il existe également donc un réel besoin d'identifier, d'isoler et de disposer de cellules précurseurs de cellules endothéliales, qui sont notamment utilisables en thérapie, par exemple en thérapie cellulaire pour le traitement de lésions tissulaires en ciblant spécifiquement le tissu lésé et/ou d'autres pathologies liées par exemple à des cellules génétiquement déficientes permettant ainsi maîtriser, d'améliorer et de diminuer le coût des traitements. Exposé de l'invention La présente invention permet précisément de résoudre les problèmes et inconvénients précités de l'état de la technique en fournissant des cellules isolées précurseurs de cellules endothéliales. Les inventeurs sont les premiers à avoir réussi à isoler des cellules humaines précurseurs de cellules endothéliales autre que les cellules souches embryonnaires, et des cellules murines précurseurs de cellules endothéliales. En outre, les inventeurs ont immortalisé lesdites cellules et ont obtenu des lignées cellulaires établies, c'est-à-dire des lignées cellulaires immortalisées, stables, non tumorigènes et dont les caractéristiques sont identiques d'une génération à une autre. Une définition d'une lignée cellulaire établie est donnée dans le livre Gene IV, de Benjamin Leuvine, 10 page1133, 6ème édition, De Boeck Université. La présente invention a donc pour objet une cellule isolée humaine précurseur des cellules endothéliales, autre que les cellules souches embryonnaires, comprenant les clusters de différentiation (CD) 133, 13, 271, 90 202b, 309, 146, 105 et 143; et ne comprenant pas les clusters de 15 différentiation CD 31 et CD 45. Les inventeurs ont mis au point des lignées après la réalisation de la culture et stabilisation du phénotype de différentes cellules qui répondent à cette définition de l'invention. Ces cellules ont été déposées à la Collection Nationale de Cultures de Microorganisme (CNCM), Institut Pasteur, 25 rue 20 du Docteur Roux, 75724 Paris cedex 15, France. Il s'agit par exemple de cellules isolées humaines précurseurs de cellules endothéliales autres que les cellules souches embryonnaires déposées à la Collection Nationale de Culture de Microorganismes (CNCM), Institut Pasteur, 25 rue du Docteur Roux, 75724 Paris cedex 15, France le 18 août 2009 sous les numéros 25 CNCM n°1-4220 (HucPEC 55.1) et n°1-4221 (HucPEC 55.2). Il s'agit par exemple de cellules isolées murines précurseurs de cellules endothéliales. En particulier, il peut s'agir d'une cellule isolée murine précurseur de cellules endothéliales autre que les cellules souches embryonnaires déposées à la Collection Nationale de Culture de 30 Microorganismes (CNCM), Institut Pasteur, 25 rue du Docteur Roux, 75724 Paris cedex 15, France le 18 août 2009 sous les numéros CNCM ° 1-4222 (MAgEC 10.5) et n° 1-4223 (MAgEC 11.5). Parmi les nombreux avantages que les inventeurs ont mis en évidences concernant la présente invention, les cellules précitées permettent d'identifier des molécules susceptibles d'induire une différentiation et/ou une spécialisation. En particulier, les inventeurs ont mis en évidence que certaines molécules étaient susceptibles de stimuler les cellules pour provoquer une angiogenèse. Aussi, la présente invention a également pour objet un procédé de criblage de molécules susceptibles d'induire une différentiation et/ou une spécialisation d'une cellule isolée telle que décrite précédemment comprenant les étapes de: introduction de la molécule à cribler dans un milieu adapté à la culture de ladite cellule, introduction d'au moins une cellule isolée dans ledit milieu, culture de ladite cellule dans ledit milieu pendant un temps suffisant pour permettre sa différentiation et/ou sa spécialisation, prélèvement d'au moins une cellule issue de ladite culture, - observation de la différentiation et/ou spécialisation de ladite cellule par observation phénotypique de la cellule et/ou par révélation de marqueurs de différentiation. Selon la présente invention, l'étape d'introduction de la molécule à 25 cribler peut être réalisée antérieurement, simultanément et/ou postérieurement à l'étape d'introduction d'au moins une cellule isolée. Dans la présente invention par « différentiation », il est entendu un mécanisme par lequel la cellule va acquérir des caractéristiques particulières. Par exemple, la différentiation peut conduire à l'obtention de 30 cellule de type vasculaire, des cellules épithéliales pigmentées ou non pigmentées, des cellules de type ostéocyte, musculaire, adipocyte etc. Dans la présente invention par « spécialisation», il est entendu un procédé par lequel la cellule va être spécialisée, c'est-à-dire que la cellule sera une cellule différenciée, par exemple des cellules endothéliales de vaisseaux, des cellules endothéliales circulantes, des cellules endothéliales de moelle osseuse, de la rate, du thymus, d'organes lymphoïdes secondaires, d'organes périphériques par exemple des cellules endothéliale du foie, du poumon, du rein ou du cerveau. Dans la présente par « molécule à cribler », il est entendu une molécule chimique, un peptide et/ou toute molécule connue de l'homme du 10 métier. Par exemple, la molécule à cribler peut être une molécule disponible dans le commerce et/ou pour laquelle on désire connaître son effet sur les cellules de la présente invention. Il peut s'agir également de molécules connues pour induire la différentiation ou la spécialisation cellulaire, par exemple des facteurs de croissance par exemple les 15 membres de la famille des facteurs de croissance dérivée des plaquettes (PDGF : « Platelet derived growth factor »), le PDGF1, PDGF2, le facteur de croissance vasculaire (VEGF : « Vascular Endothelial growth factor »), le facteur de perméabilité vasculaire (VPF : « vascular permeability factor »), les membres de la famille du facteur de croissance épidermique 20 (EGF : « Epidermal Growth Factor »), le facteur de croissance transformant (TGFa « Transforming Growth Factor a »), les membre de la famille des facteurs de croissance fibroblastique (FGF : « Fibroblast Growth Factor »), les membres de la famille des facteurs de croissance de l'insuline (IGF : « Insulin Growth Factor »), des facteurs de différentiation, 25 par exemple, les Interleukines 1L3, 11_6, 8, IP 10, le VEGF, l'angiogénine, des cytokines recombinantes, par exemple le facteur recombinant de cellule souche (rh SCF : « stem cell factor »), le facteur recombinant de stimulation des colonies macrophages-granulocytes (rh GM-CSF : « Granulocyte Macrophage Colony Stimulating Factor » Il peut s'agir 30 également de gènes thérapeutiques ciblés, de toute molécule active connue dans l'état de la technique et/ou de tout médicament indiqué dans le dictionnaire Vidal 2009 (marque enregistrée). Dans la présente par « milieu adapté à la culture », il est entendu tout milieu connu de l'homme du métier qui permet la culture de cellules. Il peut s'agir par exemple d'un milieu liquide ou solide. Il peut s'agir, par exemple, de milieux disponibles dans le commerce, par exemple, un milieu du type aMEM, EBM-2, commercialisé par la société Clonetics, Lonza, Saint Beauzire, France, les milieux Basais de la société PromoCell. L'homme 10 du métier grâce à ces connaissances générales saura aisément adapter et/ou supplémenter les milieux, si nécessaire, pour la culture des cellules. Par exemple, un milieu EBM-2 commercialisé par la société Clonetics, Lonza, Saint Beauzire, France) peut être supplémenté avec 10% de Sérum Foetal Bovin commercialisé par la société Hyclon, Longan, Utah, USA et 15 au moins un facteur de croissance décrit dans le document, tels que l'ECGS (Endothelial cell growth supplement) et/ou de différentiation décrit dans le document (VEGF). Selon un mode particulier de réalisation du procédé de l'invention, lesdites molécules induisent une différentiation et/ou spécialisation 20 conduisant à l'angiogenèse. Ces molécules peuvent être par exemple des molécules pro ou anti angiogenèse. Dans la présente, l'étape de culture peut être réalisée à une température comprise entre 20 et 40°C, de préférence à 37°C. Dans la présente la culture de cellules peut être réalisée dans tout 25 contenant connu de l'homme du métier, par exemple, il peut s'agir de boîtes de Pétri, de plaques 6 puits, 24 puits, 96 puits, de tube à essai, d'incubateur, par exemple « rollers », cultures sur supports tels que billes de Cytodex, boites en plastique Falcon et autres marques. Dans la présente l'étape de prélèvement peut être réalisée par toute 30 méthode connue de l'homme du métier. Par exemple, le prélèvement peut être réalisé via une pipette, un dispositif de prélèvement, par exemple un tube de prélèvement, préleveur de liquide à valve, tube de prélèvement par aspiration. Dans la présente l'observation phénotypique peut être réalisée par toute méthode connue de l'homme du métier. Par exemple, elle peut être réalisée par observation directe, par observation via un microscope, par exemple un microscope électronique, microscope électronique, microscope électronique à balayage, microscope inversé, à contraste de phase, microscope de fluorescence, confocal, vidéo microscope. De manière avantageuse, l'observation phénotypique peut être 10 réalisée par vidéo microscopie ce qui permet de rendre le procédé de l'invention quantitatif. La caractérisation phénotypique peut être réalisée par étude de la fixation d'anticorps spécifiques éventuellement marqués et/ou révélés par un second anticorps dirigé contre la molécule d'immunoglobuline 15 concernée et fluorescent. Le marquage peut être révélé par cytofluorimétrie en flux. Dans la présente la révélation de marqueurs de différentiation peut être réalisé par tout moyens connus de l'homme du métier, par exemple 20 aux moyens de colorants spécifiques, d'anticorps spécifiques desdits marqueurs de différentiation tel que présenté dans le document pour les marquages cytochimiques, par exemple des anticorps disponibles dans le commerce, par exemple des anticorps monoclonaux, des anticorps polyclonaux, par exemple des anticorps monoclonaux de souris 25 commercialisés par la société Sigma, la société Becton Dickinson Biosciences , par révélation fluorométrique utilisant des anticorps marqués et/ou une réaction enzymatique. Avantageusement selon la présente invention, l'étape d'identification du phénotype et/ou des marqueurs permet de connaître l'effet de la 30 molécule criblée sur la cellule isolée cultivée. La présente invention a également pour objet un kit de mise en oeuvre du procédé décrit précédemment comprenant : - au moins une cellule isolée selon l'invention, et un moyen de détection de la différentiation et/ou spécialisation cellulaire. Dans la présente invention, un moyen de détection peut être tout moyen connu de l'homme du métier permettant par exemple d'observer visuellement les cellules, par exemple un moyen de détection optique, par exemple un microscope tel que décrit précédemment, par exemple un moyen de détection optique permettant de détecter des marqueurs de différentiation par exemple un anticorps contre un marqueur de différentiation et/ou tout moyen connu de l'homme du métier permettant de détecter la différentiation et/ou la spécialisation cellulaire. Il peut s'agir par exemple des anticorps décrits précédemment. La présente invention a également pour objet une culture cellulaire comprenant au moins une cellule isolée décrite précédemment. Dans la présente, la culture cellulaire peut être, par exemple toute culture de cellule comprenant au moins une cellule de l'invention, par exemple une cellule endothéliale précurseur humaine ou murine selon l'invention. Les inventeurs ont découvert que les cellules isolées selon l'invention étaient capables de cibler des sites pathologiques et également de régénérer de nouveaux tissus endothéliaux. En particulier, les inventeurs ont découvert que les cellules selon l'invention sont capables de cibler spécifiquement des tumeurs et/ou des tissus lésés. Ainsi les cellules de l'invention peuvent apporter aux niveaux de sites pathologiques des molécules thérapeutiques et/ou des gènes. Les cellules de l'invention peuvent également par exemple cibler des tissus lésés et/ou nécrosés afin de régénérer lesdits tissus. Ainsi, la présente invention a pour objet une cellule isolée selon l'invention pour l'utilisation comme médicament et/ou une utilisation la fabrication d'un médicament. De préférence, le médicament est destiné au traitement des cellules génétiquement déficientes, des lésions tissulaires, de dommages au niveau de tissus endothéliaux, des tissus nécrosés. Par exemple, le médicament peut être destiné au traitement d'infarctus, de lésions vasculaires, de sites de dommages dus au diabète. Selon la présente invention, les cellules isolées de l'invention peuvent être également utilisées comme transporteurs de gènes et/ou d'au moins une molécule thérapeutique vers un site pathologique. L'expression du gène peut être conditionnée aux conditions environnementales du site pathologique. Avantageusement, l'adressage de gènes et/ou d'au moins une molécule thérapeutique à un site pathologique permet en outre d'améliorer l'efficacité de la molécule via une action directe et ciblée permettant par exemple de diminuer la quantité nécessaire pour obtenir l'effet thérapeutique et de diminuer l'apparition d'effets secondaire et/ou de diminuer les effets secondaires liés aux molécules Dans la présente par « site pathologique », il est entendu par exemple toute anomalie tissulaire et/ou cellulaire, par exemple il peut s'agir d'une lésion tissulaire, des tissus nécrosés, cellules génétiquement déficientes, de tumeurs et/ou tout site de prolifération d'une pathologie. De préférence, il s'agit d'une lésion tissulaire, des tissus nécrosés, cellules génétiquement déficientes, de tumeurs, de blessures, d'une ischémie. Dans la présente par « molécule thérapeutique », il est entendu toute molécule connue de l'homme du métier susceptible d'être utilisée pour le traitement d'une pathologie dans le domaine médical et/ou vétérinaire, il peut s'agir par exemple de toute molécule indiquée dans le dictionnaire Vidal 2009. La présente invention trouve donc avantageusement des applications dans le domaine thérapeutique, par exemple vétérinaire et/ou médicale pour, par exemple le traitement de lésions tissulaire, l'administration de molécules thérapeutiques, mais également dans le domaine pharmaceutique dans l'identification de molécules susceptibles d'induire une différentiation et/ou une spécialisation de cellules précurseurs de cellules endothéliales... D'autres avantages pourront encore apparaître à l'homme du métier à la lecture des exemples ci-dessous, illustrés par les figures annexées, donnés à titre illustratif. Brève description des figures La figure 1 est une photographie présentant la morphologie de deux lignées cellulaires HucPEC 55.1 (A) et HucPEC 55.2 (B) La figure 2 représente des histogrammes de cytométrie en flux des lignées cellulaires HucPEC 55. 1 et HucPEC 55.2 avec des marqueurs positifs (A) et négatifs (B). Les courbes vides représentent les contrôles isotypiques et les courbes pleines les cellules marquées. L'ordonné représente le nombre de cellules (counts) et l'abscisse la fluorescense (FLH2). La figure 3 est une photographie représentant la morphologie sphéroïde des lignées cellulaires HucPEC 55.1 et HucPEC 55.2 mises en culture dans un milieu de différentiation cellulaire hématopoïétique. La figure 4 représente des photographies de gels de transcrits d'ARNm codant pour des gènes de multi résistance aux médicaments (MDR) : La figure 4A représente une photographie dans lequel le transcrit code pour le MDR1 ; la figure 4B représente une photographie dans lequel le transcrit code pour le MDR3 ; la figure 4C représente une photographie dans lequel le transcrit code pour le MRP1 ; la figure 40 représente une photographie dans lequel le transcrit code pour le BCRP, la figure 4E représente une photographie dans lequel le transcrit code pour le LRP et la figure 4F représente une photographie dans lequel le transcrit est celui du gène de la 6-actine. Sur les photographies, la ligne M correspond aux marqueurs de poids moléculaires; la ligne 1 aux cellules HucPEC 55.1; la ligne 2 aux cellules HucPEC 55.2. La figure 5 représente un diagramme de la sécrétion de cytokines par les cellules HucPEC 55.1 et HucPEC 55.2 en conditions hypoxie ou normoxie. L'axe des ordonnées représente la quantité de facteurs sécrétés en fonction de la quantité de cellule et du temps et l'abscisse indique les différentes cytokines sécrétées. Les figures 6 A et B représentent des photographies représentatives de la formation de pseudovaisseaux sur Matrigel (marque de commerce) en fonction du temps, par les cellules HucPEC 55.1, HucPEC 55.2 et HSkMEC. La figure 7 représente des photographies de la détection de marqueurs spécifiques : la VE-cadhérine, le cluster de différentiation CD31, l'enzyme de conversion de l'Angitensine (ACE), le facteur vasculaire de von Willerbrand (vWf) en fonction des cellules précurseurs de cellules endothéliales félines et du temps AGM 10,5 jours, AGM 11,5 jours. La figure 8 est un diagramme en bâton représentant l'expression de galectines en fonction du temps. L'ordonnée représente l'intensité relative de la fluorescence correspondant au niveau d'expression et l'abscisse le temps. La figure 9 est un diagramme en bâton représentant l'interaction de Collectines avec des groupements contenant des résidus de type Glucose (G1c-), Glucose N acétyl (GIcNAc-), Mannose (Man-) et fucose (Fuc-). L'ordonnée représente l'intensité relative de la fluorescence correspondant au niveau d'expression et l'abscisse le temps. La figure 10 est un diagramme en bâton représentant l'interaction de la lectine avec la rhamnose en fonction du temps. L'ordonnée représente l'intensité relative de la fluorescence correspondant au niveau d'expression et l'abscisse le temps. La figure 11 est un diagramme en bâton représentant l'expression du récepteur au Mannose 6Phosphate sur les cellules. L'ordonnée représente l'intensité relative de la fluorescence correspondant au niveau d'expression et l'abscisse le temps. La figure 12 est un diagramme en bâton représentant l'expression 10 des marqueurs CD34, type podocalyxin (PODXL : « Podocalyxin-like ») et le récepteur Ephrine type B 4 (EphB4 : « Ephrin Type B Receptor 4 ») en fonction des cellules. L'ordonnée représente l'intensité relative de fluorescence et l'abscisse les cellules testées. La figure 13 est un diagramme en bâton représentant l'expression 15 du marqueur CCR5 dans les lignées cellulaires MAgEC 10,5 (en pointillés) et 11,5 (hachuré) mesurée par cytofluorimétrie en flux en fonction des conditions de normoxie ou hypoxie. L'ordonnée représente l'intensité relative de fluorescence et l'abscisse les conditions normoxie ou hypoxie La figure 14 est un diagramme en bâton représentant l'expression 20 du marqueur CCR10 dans les lignées cellulaires MAgEC 10,5 (en pointillés) et 11,5 (hachuré) en fonction des conditions de normoxie ou hypoxie, mesurée par cytofluorimétrie en flux. L'ordonnée représente l'intensité relative de fluorescence et l'abscisse les conditions normoxie ou hypoxie. 25 La figure 15 est un diagramme en bâton représentant l'expression du marqueur CXCR4 dans les lignées cellulaires MAgEC 10,5 (en pointillés) et 11,5 (hachuré) mesurée par cytofluorimétrie en flux en fonction des conditions de normoxie ou hypoxie. L'ordonnée représente l'intensité relative de fluorescence et l'abscisse les conditions normoxie ou 30 hypoxie. La figure 16 représente des photographies de gels de transcrits d'ARNm codant pour les gènes Kdr (colonnes 1 à 4), Flt4 (colonnes 7 à 10), CCR7 (colonnes 13 à 16), CX3CR1 (colonnes 19 à 22) dans les cellules MAgEC 10,5 et 11,5 en fonction des conditions de normoxie (N) ou hypoxie (H). Les colonnes - et + correspondent respectivement aux témoins négatifs et positifs. La figure 17 est un diagramme en bâton représentant la production de VEGF mesurée par ELISA par les lignées cellulaires MAgEC 10,5 (en pointillés) et 11,5 (hachuré) en fonction des conditions de normoxie ou hypoxie. L'ordonnée représente la quantité de VEGF estimée après 10 établissement d'une courbe étalon, en pg (picogrammes) par million de cellules et l'abscisse les conditions normoxie ou hypoxie. La figure 18 est un diagramme en bâton représentant la production de CXCL12 mesurée par ELISA, par les lignées cellulaires MAgEC 10,5 (en noir) et 11,5 (hachuré) en fonction des conditions de normoxie ou 15 hypoxie. L'ordonnée représente la quantité de VEGF estimé après établissement d'une courbe étalon, en pg (picogrammes) par million de cellules et l'abscisse les conditions normoxie ou hypoxie. La figure 19 est un diagramme en bâton représentant la production de CCL17 mesurée par ELISA par les lignées cellulaires MAgEC 10,5 20 (hachuré) et 11,5 (en noir) en fonction des conditions de normoxie ou hypoxie. L'ordonnée représente la quantité de VEGF estimé après établissement d'une courbe étalon, en pg (picogrammes) par million de cellules et l'abscisse les conditions normoxie ou hypoxie. La figure 20 est un diagramme en bâton représentant la production 25 de CXCL1 visualisé par ELISA par les lignées cellulaires MAgEC 10,5 (hachuré) et 11,5 (en noir) en fonction des conditions de normoxie ou hypoxie. L'ordonnée représente la quantité de VEGF estimé après établissement d'une courbe étalon, en pg (picogrammes) par million de cellules et l'abscisse les conditions normoxie ou hypoxie. 30 EXEMPLES Exemple 1: obtention et caractérisation des cellules humaines isolées précurseurs de cellules endothéliales A Matériels et Méthodes A.1 Echantillons sanguins Des échantillons de sang ont été prélevés à partir de sang de cordons humains. Le sang du cordon a été collecté d'accouchements normaux, menés à terme au « Chair of Obstetrics and Gynecology » de l'université médicale de Wroclaw. La veine ombilicale a été piquée avec une aiguille de calibre 17 reliée à un système de sac de récupération fermé contenant une solution de dextrose de phosphate de citrate comme anticoagulant des sachets de sang (commercialisé par MACO Pharma, Wroclaw, Poland. Le volume récolté était en moyenne 50-110 ml à partir d'un placenta. Le consentement éclairé écrit a été obtenu de toutes les mères avant le travail et l'accouchement. Les protocoles d'échantillonnage du sang de cordon ombilical humain ont été approuvés par la Commission de Bioéthique à l'université médicale de Wroctaw. A.2. Isolement de cellules mononucléaires. Les cellules mononucléaires du sang de cordon ombilical ont été isolées par centrifugation de gradient de densité en utilisant Lymphoflot (marque de commerce) à une concentration de 1,077 g/ml (commercialisées par la société Biotest, Dreieich, Germany). La couche de cellules mononucléaires a été collectée, les cellules ont été lavées deux fois avec 1 mM d'éthylène diamine tetra acétate (EDTA) dans du tampon phosphate salin (« Phosphate Buffered Saline » PBS) et conservées congelées dans de l'azote liquide jusqu'à leur utilisation. A.3 Culture des cellules mononucléaires et leur immortalisation Les cellules mononucléaires isolées (1 X 106 ml) ont été cultivées dans des boîtes de culture de tissus dont le plastique est recouvert d'une couche de fibronectine humaine (Biocoat (marque de commerce) commercialisée par la société Becton Dickinson Biosciences, Grenoble, France) à 37°C dans une atmosphère de 95% air et 5% de CO2. Le milieu utilisé pour la culture cellulaire était le EBM-2 (marque de commerce) commercialisé par la société Clonetics, Lonza, Saint Beauzire, France, supplémenté avec 10% de Sérum Foetal Bovin commercialisé par la société Hyclon, Longan, Utah, USA; et des facteurs de croissance et de différentiation adaptés. Après 3 jours de culture, le milieu a été supplémenté avec le surnageant de cellules (50% vol/vol) de lignées cellulaires rétrovirales TE FLY GA hTERT obtenues dans notre laboratoire tel qu'indiqué dans Szyda A, Paprocka M, Krawczenko A, et al. Optimization of a retroviral vector for transduction of human CD34 positive cells. Acta Biochim Pol. 2006;53:815-823 [ 1 3]. Après 3 semaines de culture, 2 clones de cellules proliférantes ont été répliqués. Les cellules ont été maintenues 1 mois en culture dans du milieu EBM-2 medium, supplémenté avec 10% FCS (Hyclon) et des facteurs de croissance : rhSCF(Sigma), rhSCGF (10Ong/mL), (AbD PeproTech, rhFlt-3 ligand (R&D systems, rh VEGF (R&D systems or Sigma. Les deux clones obtenus ont été nommés HucPEC 55. 1 et HucPEC 55. 2. Des photos des cellules en croissance ont été prises avec le microscope Axiovert S Zeiss commercialisé par la société Jena, Allemagne équipé avec une caméra digitale Fine Pix 5602 (marque de commerce) commercialisée par la société Fuji Film. A.4. lmmunomarquage des lignées cellulaires HucPEC 55.1 et HucPEC 30 55.2 Le phénotype des cellules cultivées a été analysé en utilisant des anticorps polyclonaux de lapin non couplés anti-facteur de Willebrand commercialisé par la société Sigma et les anticorps monoclonaux de souris suivants : anti-CD133 couplé à la phycoérythrine (PE) et anti-CD271 couplé à l'iso thiocyanate de fluorescéine (FITC) commercialisé par la société Miltenyi Biotec, Paris, France, anti-CD105 couplé au PE, antiCD143, anti-CD146, anti-CXCR4, anti-hVEGFR2 et anti-CD202 non-couplés commercialisés par la société R&D Systems, anti-CD13 couplé au PE, anti-CD34, anti-CD38, anti-CD54, anti-CD90 commercialisé par la 10 société Becton Dickinson Biosciences, anti-CD45 couplé au FITC, anti- CD44 et anti-CD15s non couplés commercialisé par la société Becton Dickinson Biosciences, anti-CD31 couplé au FITC commercialisé par la société Sigma. Tous les anticorps directement marqués ont été utilisés a raison de 1 15 X w5 cellules/échantillon, suspendues dans du tampon phosphate salin (« Phosphate Buffered Saline » PBS) supplémenté de 1% FCS à la concentration adaptée. L'incubation des cellules avec les anticorps se déroule pendant 30 min à 4°C. Après l'incubation, les cellules ont été soigneusement lavées. Les contrôles sont réalisés à l'aide 20 d'immunoglobulines non spécifiques, de même isotype. De manière similaire, trois anticorps non marqués ont été utilisés pour 1 X 105 cellules/échantillon suspendues dans du PBS supplémenté de 1% FCS. L'incubation est réalisée pendant 30 min à 4°C. Après l'incubation, les cellules ont été soigneusement lavées et les anticorps 25 secondaires anti-souris ou anti-lapin marqués au FITC ont été appliqués de manière subséquente pendant 30 min à 4°C. Avant l'analyse par trieur de cellules Cytomètre en flux à fluorescence (« fluorescence-activated cell sorter » FACS), les cellules ont été lavées dans du PBS. Les contrôles sont réalisés à l'aide d'immunoglobulines de 30 lapin ou de souris de même isotype. Avant la détection du CD143 et du facteur von Willebrand, les cellules ont été fixées et perméabilisées avec 2% de paraformaldéhyde et 0,2% de saponine dans une solution de PBS pendant 10 min pour permettre le marquage intracellulaire. Les cellules ont été analysées par cytométrie de flux en utilisant FACSCalibur (marque de commerce) commercialisé par la société Becton Dickinson, CA, USA. Les données ont été acquises et enregistrées pour 5000-10000 évènements en utilisant CellQuest software (marque de commerce) commercialisé par la société Becton Dickinson et présentées pour être analysées sous forme d'histogrammes en utilisant le logiciel WINMDI 2.7. A.5. Capacité des lignées cellulaires HucPEC 55. 1 et HucPEC 55. 2 à croître et se différencier en cellules hématopoïétiques dans un milieu semi15 solide La capacité des cellules HucPEC 55. 1 et HucPEC 55. 2 à croître et se différencier en cellules hématopoïétiques a été évaluée en utilisant MethoCult GF H4434 (marque de commerce) commercialisé par la société StemCell Technologies Inc.Vancouver, Canada, contenant les cytokines 20 recombinantes suivantes : rhSCF (50 ng/ml), rhGM-CSF (10 ng/ml), rhIL3 (10 ng/ml) et érythropoïétine recombinante (3 unités/ml). 103 cellules des deux lignées cellulaires testées ont été suspendues dans 1m1 du milieu semi-solide MethoCult (marque de commerce) commercialisé par la société StemCell et transférées dans des plaques de 25 24 puits. Après 7 jours de culture, des photos des clusters de cellules en croissance ont été prises. A.6 Détection des ARNm dans les précurseurs cellulaires des lignées HucPEC 55. 1 et HucPEC 55. 2 par transcription réverse et réaction de 30 polymérase en chaîne (RT-PCR) L'ARN cellulaire total a été isolé de 2.5 X 106 cellules en utilisant le MiniKit RNeasy Protect (marque de commerce) commercialisé par la société Qiagen, Courtaboeuf, France. Le premier brin d'ADNc synthétisé a été fait par transcription réverse de 1 pg de l'ARN total en utilisant l'Omniscript Reverse Transcriptase (marque de commerce) commercialisé par la société Qiagen. La réaction de réaction en chaîne par polymérase (PCR) pour détecter les ARNm des MDR1, MDR3, MRP1, BCRP et LRP ainsi que de la 3 actine (gène gardien) a été faite en utilisant des amorces spécifiques et les conditions de réalisations décrites dans le Tableau 1. 10 Tableau 1 Amorces SEQ ID Séquence n ucléotidiq ue Conditions de NO réalisation de la PCR MDR-1s 1 5'-AAGCTTAGTACCAAAGAGGCTCTG-3' 37 cycles de 94°C, 1 min; 58°C, 1 min; 72°C, 1 min produit obtenu: 243 pdb MDR-las 2 5'-GGCTAGAAACAATAGTGAAAACAA-3' MDR3-s 3 5'-AGGGCGACTTTGAACTGGGC-3' 35 cycles de [94°C, 1 min; 60°C, 1 min; 72°C, 2 min], produit obtenu: 268 pdb MDR3-as 4 5'-TTTGCCTGGATTTAGCAGCG-3' MRP1-s 5 5'-AGTGACCTCTGGTCCTTAAACAAGG-3 35 cycles de [94°C, 1 min; 56°C, 1 min; 68°C, 1 min], produit obtenu: 657 pdb MRP1-as 6 5'-GAGGTAGAGAGCAAGGATGACTTGC- 3' BCRP-s 7 5'-TTAGGATTGAAGCCAAAGG-3' 35 cycles de [94°C, 40 s; 51°C, 1 min; 72°C, 1 min], produit obtenu: 446 pdb BCRP-as 8 5'-TAGGCAATTGTGAGGAAAATA-3' LRP-s 9 5'-GTCTTCGGGCCTGAGCTGGTGTCG-3' 334T sle5s5dec [9445°C , s;72°C, 45 s], produit obtenu: 240 LRP-as 10 5'-CTTGGCCGTCTCTTGGGGGTCCTT-3' pdb 13 actine-s 11 5'-CCAGAGCAAGAGAGGCATCC-3' 28 cycles de [94°C, 30 s; 55°C, 45 s; 72°C, 60 s], produit obtenu: 450 pdb 13 actine- 12 5'-CTGTGGTGGTGAAGCTGAAG-3' as A.7. Sécrétion de diverses cytokines par les lignées cellulaires HucPEC 55.1 et HucPEC 55.2 La sécrétion des cytokines a été évaluée en utilisant le test de billes cytométriques commercialisé par la société Becton Dickinson Biosciences. Les molécules suivantes ont été testées : protéine inductible par l'interféron 10 (interferon inductibe protein 10, IP-10), interleukine 6 (IL6), interleukine 8 (IL8), Facteur de croissance de cellules endothéliales vasculaires (VEGF), angiogénine. Les surnageants des lignées cellulaires HucPEC 55. 1 et HucPEC 55. 2 ont été collectés après culture pendant 16h soit en normoxie (20% 02) soit en hypoxie (1% 02) et conservés congelés à - 80°C avant de les utiliser. Les expériences ont été faites en accord avec le protocole du fabricant. Environ 300 billes ont été analysées pour chaque cytokine. Les analyses de cytométrie de flux du marquage des billes ont été réalisées en utilisant le LSR (marque de commerce) commercialisé par la société Becton Dickinson et les résultats ont été analysés en utilisant le logiciel de test FCAP (marque de commerce) commercialisé par la société Becton Dickinson. A. 8. Formation de pseudovaisseaux. La matrice Matrigel (marque de commerce) commercialisé par la société Becton Dickinson Biosciences a été diluée à 1/2 dans le milieu basal OptiMEM (marque de commerce) commercialisé par la société Invitrogen, Cergy Pontoise, France, à 4°C, distribué dans des microplaques de 96 puits dans un volume de 50 pl et laissées à polymériser à 37°C pendant 30 min. Les cellules (1.2 X 104 cellules) des lignées HSkMEC (cellules humaines microvasculaires de peau) obtenues selon le procédé décrit dans Kieda et al. « New human microvascular endothelial cell lines with specific adhesion molecules phenotypes. » Endothelium. 2002;9(4):247-61 [14]. Les cellules HucPEC 55. 1 et HucPEC 55. 2 ont été ensemencées sur des microplaques revêtues de Matrigel (marque de commerce) commercialisé par la société Becton Dickinson Biosciences dans un volume de 100 pl et les cultures ont été faites soit dans des conditions de normoxie (20% 02) soit dans des conditions d'hypoxie (1% 02). Les photos ont été prises à l'aide d'un microscope inversé (Axiovert 200M (marque de commerce) Zeiss, Le Pecq, France) équipé d'une caméra numérique à haute résolution Axiocam (marque de commerce) commercialisée par la société Zeiss, Le Pecq, France) reliée à un ordinateur exécutant le logiciel d'acquisition Axiovision commercialisé par la société Zeiss. La visualisation directe et en temps réel de la formation des pseudo-vaisseaux a été surveillée pendant 24h. B. Résultats Deux clones de cellules en prolifération ont été obtenus après la transduction des cellules mononucléaires sanguines du cordon ombilical humain avec un surnageant de la lignée cellulaire TE FLY GA hTERT [13], produisant des rétrovirus contenant le gène de la transcriptase inverse des télomérases humains. Les transductions ont été faites sur 4 échantillons différents de cellules mononuclées sanguines de cordon ombilical, cultivées dans les mêmes conditions, en présence d'un mélange de facteurs promoteurs de la croissance. Deux clones ont été obtenus et nommés HucPEC 55. 1 et HucPEC 55. 2 La morphologie des deux lignées cellulaires est représentée sur la Figure 130 B.1. Détermination de l'immunophénotype des deux lignées cellulaires HucPEC 55. 1 et HucPEC 55. 2 Les deux lignées cellulaires ont tout d'abord été analysées pour l'expression des marqueurs des cellules précurseurs/cellules souche et pour les marqueurs des cellules endothéliales, comprenant des récepteurs de facteurs de croissance et des molécules d'adhésion choisies comme présenté sur la Figure 2A. Les deux lignées cellulaires expriment CD133 qui est connu pour être un marqueur général des cellules souches normales et néoplasiques. Elles expriment également CD13 (marqueur 10 des cellules souches hématopoïétiques), CD271 (marqueur des cellules souches non hématopoïétiques) et CD90 (marqueur des cellules souches mésenchymateuses). Les deux lignées cellulaires étaient positives pour l'expression de CXCR4 et faiblement positives pour CD44 et CD15s, qui peuvent être exprimées à la fois sur les cellules souches et sur les cellules 15 endothéliales. Les cellules expriment également des marqueurs typiques des cellules endothéliales : CD202b, VEGFR2, CD146, CD105 et expriment faiblement CD143. Les marqueurs qui ne sont pas exprimés par ces lignées cellulaires sont rassemblés comme présenté sur la Figure 2B. Les deux lignées HucPEC 55.1 et HucPEC 55.2 étaient négatives pour 20 CD34, CD117, CD38 et CD45 ce qui suggère qu'elles ne sont pas d'origine hématopoïétique. Elles n'exprimaient pas les CD31 et vWf, marqueurs des cellules endothéliales différenciées. B.2. Capacité des lignées cellulaires HucPEC 55.1 et HucPEC 55.2 de 25 croissance et de différentiation en cellules hématopoïétiques dans un milieu semi-solide. Les deux lignées cellulaires ont été cultivées dans un milieu semisolide supplémenté en facteurs de croissance et de différentiation hématopoïétiques pour évaluer leur capacité à se différencier en cellules 30 hématopoïétiques. Les deux lignées cellulaires sont capables de croître dans un milieu semi-solide, mais ne se différencient pas en cellules hématopoïétiques. Après 7 à 9 jours de culture, les cellules forment des sphéroïdes multicellulaires compacts. Elles ne montrent aucun signe de différentiation en érythrocytes, granulocytes ou monocytes, comme le montre la Figure 3. Cette expérience démontre que les cellules isolées ne sont donc pas des cellules précurseurs de cellules hématopoïétiques. B.3. Expression des transcrits des ARNm de résistance multidrogues détectés par RT-PCR 10 Une réverse transcriptase de la réaction en chaîne par polymérase (RT-PCR) des ARNm codant pour les protéines de résistance multidrogues a été utilisée pour suivre l'expression de leurs gènes dans les lignées HucPEC 55. 1 et HucPEC 55. 2. L'expression des produits des gènes pour MDR1, MDR3, MRP1, BCRP et LR est présentée sur la Figure 4. Les 15 ARNm de toutes les protéines de multi résistance aux drogues sont présents dans les deux lignées cellulaires avec des niveaux similaires, à l'exception de MDR3 qui semble être exprimée à un niveau plus élevé dans la lignée HucPEC 55. 2 comparé à la lignée HucPEC 55. 1. 20 B.4. Sécrétion de cytokines par les lignées cellulaires HucPEC 55. 1 et HucPEC 55. 2 Le test cytométrique sur billes a été utilisé pour évaluer la sécrétion des cytokines choisies (IP-10, IL6, IL8, VEGF et angiogénine) par les cellules HucPEC 55. 1 et HucPEC 55. 2 en croissance dans des conditions 25 normoxiques et hypoxiques. La Figure 5 montre que l'altération de la pression partielle d'oxygène influence la production de cytokines proangiogéniques à des points variables par les deux lignées cellulaires. En effet, la production de cytokines proangiogéniques IL8 et angiogénine a augmenté de manière significative en hypoxie. Les deux lignées cellulaires 30 n'ont pas produit du VEGF en normoxie, mais l'expression de ce facteur proangiogénique a été induite par l'hypoxie dans les deux lignées cellulaires. IP10, qui est une cytokine antiangiogénique, a été produite à des niveaux beaucoup plus élevés par HucPEC 55. 1 comparé à HucPEC 55. 2 et n'a pas été changé par l'hypoxie. B.5. Propriétés angiogéniques des lignées cellulaires HucPEC 55. 1 et HucPEC 55. 2 Les deux lignées cellulaires ont été testées pour leur potentiel angiogénique et le réarrangement en pseudo vaisseaux sur une matrice semi solide. La cinétique de ce réarrangement vers des structures de type 10 tube a été comparée en hypoxie (1% 02) versus normoxie. La Figure 6A indique qu'en normoxie, les deux lignées HucPEC 55. 1 et HucPEC 55. 2 sont capables de commencer le processus angiogénique d'une manière comparable à la lignée de référence HSkMEC qui est une lignée cellulaire microvasculaire endothéliale différenciée et dérivée de la peau. Ce résultat 15 démontre clairement que les cellules se sont connectées ensemble pour former un réseau. Le réseau a évolué pendant moins de 7 heures, pour les lignées cellulaires HucPEC 55. 1 et HucPEC 55. 2, puis elle s'est arrêtée. Concernant la lignée HSkMECs, son évolution a duré 17 heures. Après 7 heures, les lignées cellulaires HucPEC 55. 1 et HucPEC 55. 20 2 sont restées où elles étaient et ont commencé à proliférer. Les conditions hypoxiques ont accéléré de manière efficace le processus de formation du tube pour les cellules HucPEC 55. 2, comme cela est montré sur la Figure 6B. Ce processus a aussi été accéléré pour la lignée HucPEC 55. 1 bien qu'il soit resté plus lent que pour HucPEC 55. 2. Outre l'accélération, 25 l'hypoxie a causé également une différentiation plus complète vers la formation de structures de type vaisseaux qui n'étaient pas accomplie en normoxie par aucune des lignées cellulaires HucPEC 55. 1 et HucPEC 55. 1 et HucPEC 55. 2. 30 Tel que démontré dans cet exemple les lignées cellulaires établies HucPEC 55. 1 et HucPEC 55. 2 sont des cellules précurseurs de cellules endothéliales, qui ont des propriétés angiogéniques et ont un temps d'évolution inférieur aux lignées cellulaires connues permettant une prolifération plus rapide. Exemple 2: obtention et caractérisation des cellules murines isolées précurseurs de cellules endothéliales A Matériels et Méthodes A1. Isolement des cellules Les cellules ont été isolées à partir de la région Aorto-Gonado- Mésonéphrotique (AGM pour « Aorta Gonad Mesonephros regions ») d'embryons C57BI6 10,5 et 11, 5 jours post coitum (dpc pour « day post coitum »). Les embryons ont été obtenus à partir de croissement de souris FVB provenant du laboratoire Transgénèse et Archivage d'Animaux Modèles - 15 UPS44 (TAAM) CNRS Orléans. Après une culture primaire sur des plaques primaria (Falcon, Becton and Dickinson) dans du RPMI (« Roswell Park Memorial Institute medium »), les cellules ont été laissées pour croissance et les cultures résultants ont été immortalisées tel que décrit précédemment pour 20 l'immortalisation des cellules humaines après 4 jours via l'utilisation d'un plasmide contenant l'antigène large T SV40 large et des liposomes cationiques. Des clones génétycines résistants ont été obtenus et sélectionnés. Différents clones ont été développés et caractérisés sur la base de 25 l'expression de marqueurs de cellules endothéliales. A partir de ces clones, deux lignées immortalisées ont été obtenues et utilisées pour des expériences complémentaires, il s'agit de : - MAgEC 10,5: pour cellules endothéliales d'embryons de souris Gonado aortique mésonéphros 10,5 jour post coitum (« Mouse Aorta- 3 0 Gonad Mesonephros Endothelial Cells » SV40 large T-antigen immortalization) MAgEC 11,5: pour cellules endothéliales d'embryons de souris Gonado aortique mésonéphros 11, 5 jour post coitum (« Mouse AortaGonad Mesonephros Endothelial Cells » (SV40 large T-antigen immortalization)) Les cellules ont été cultivées dans un incubateur à 37°C avec une atmosphère humidifiée comprenant 5% CO2, 21% 02. Toutes les lignées cellulaires ont été cultivées dans un milieu OptiMEM medium (commercialisé par Gibco, France) complété avec 2% de FBS (commercialisé par PAA, Austria), 0,2% de fungizone (250 mg/ml, commercialisé par Gibco, France) et 1% de pénicilline-streptomycine (10.000 unités/ml, commercialisé par Gibco, France) A.2 Caractérisation des cellules A.2.1. Analyse de l'expression de gènes par transcription réverse et réaction de polymérase en chaîne (RT-PCR) L'ARN total a été isolé avec un kit Qiagen RNeasy Kit (marque déposée) selon le protocole du fournisseur. 750 ng ou 1000 ng ont été chargés pour une réaction standard de transcription inverse en utilisant des amorces oligo-dT. L'expression de différents gènes a été observée, en particulier les gènes codant pour la chimiokine (C-X-C motif) ligand 16 (CXCL16), le gène SDF-1, le gène codant pour la chimiokine (C-X3-C motif) ligand 1 (CX3CL1), le gène codant pour la chimiokine 6 cystéine (6CKine), le gène CTACK, le gène codant pour le récepteur du domaine d'insertion de la kinase ((Kdr) Kinase insert domain receptor), le gène codant pour le récepteur tyrosine kinase pour les facteurs de croissances endothéliales c et d ((F1t4) tyrosine kinase receptor for vascular endothelial growth factors C et d »), le gène codant pour le récepteur de la chimiokine (CC motif) (CCR7), le gène codant pour la chimiokine (C-X3-C motif) récepteur 1 (CXC3CR1). Les Réactions de Polymérisation en Chaine (PCRs) ont été réalisées en utilisant les amorces décrites dans le tableau 2 et avec le protocole (a) à (e) suivant : (a) 95°C - 3 min 5 (b) 95°C -45 sec (c)Température d'hybridation - 45 sec (d) 72°C - 45 sec (e) 72°C - 7 min (b), (c) et (d) répétées 30 fois (d) (30 cycles) 10 Tableau 2 Gène SEQ amorce Séquence nucléotidique ID NO CXCL16 13 Sens 5'-AGACAGCAAGAAGCACCAGG-3 14 Anti-sens 5'- CCTCTCCCATGTCATCATCC-3' SDF-1 15 Sens 5'-GTTCTTCGAGAGCCACATCG-3' 16 Antisens 5'-ATGGCGGAGTGTCTTTATGC-3' CX3CL1 17 Sens 5'-TGCGACAAGATGACCTCACG-3 18 Antisens 5'-ATCCTGTGCCTCGGAAGTTG-3' 6CKine 19 Sens 5'-GGACTGCTGCCTTAAGTACAGC-3' 20 Antisens 5'-GCTATCCTCTTGAGGGCTGTG-3' CTACK 21 Sens 5'-GGCTGAGTGAGTGAGCATGATGG-3' 22 Antisens 5'-GGGATGAACACAGACACTGC-3' Kdr 23 Sens 5'-AGAGTGTGTCCCTGTTGTGC-3' 24 Antisens 5'-GGGGTAGGATTTCCAGATGC-3' Flt4 25 Sens 5'-GAGTGACTCCCTGGAGATGC-3' 26 Antisens 5'-TAGCCCGTCTTGATGTCTGC-3' Ccr 7 27 Sens 5'-AAACCCAGGAAAAACGTGC-3' 28 Antisens 5'-RGTAGACGCCAAAGATCCAGG-3' CXC3R1 29 Sens 5'-TCTTCATCACCGTCATCAGC-3' 30 Antisens 5'-GATGCGGAAGTAGCAAAAGC-3' La température d'hybridation des amorces décrites dans le tableau 2 était de 57°C. Les produits issus de cette RT-PCR ont été déposé dans un gel de migration afin d'identifier si le gène est exprimé. Test ELISA Tout les tests ELISA ont été réalisés avec le système R&D ELISA DuoSet (marque déposée) selon le protocole du fabriquant. Après collecte des surnageants cellulaires, ils ont été comptés et les résultats ont été normalisés aux nombres de cellules. La détection du facteur de von Willebrand exprimé dans le 10 cytoplasme, dans les plaques de Weibel Palacle, de l'enzyme de conversion de l'Angiotensine présente dans la membrane nucléaire, le cluster de différentiation CD31 et la VE-cadhérine a été réalisée par microscopie de fluorescence et en contraste de phase équipé avec le DIC (Zeiss, Axiovert 200). 15 A.2.3. Sécrétion de cytokines par les lignées cellulaires Le procédé CBA (« Cytometric Bead Array ») commercialisé par la société Becton-Dickinson, USA, le cytomètre en flux LSR commercialisé par BD, USA et le logiciel FCAP Array Software commercialisé par BD, 20 USA ont été utilisés pour déterminer les niveaux de KC, TNFa, IFNy, GM- CSF, IL-1[3, IL-4, IL-6, IL-10, IL-12 collectés dans le surnageant selon le protocole du fournisseur. Cinq courbes paramétriques logistiques ont été ajustées à des échantillons standards et les résultats ont été normalisées au nombre de cellules. 25 La production de VEGF, des chimiokines CXCL12, CCL17 et CXCL1 par les lignées cellulaires MAgEC 10,5 et 11,5 a également été étudiée. A.2.4. lmmunomarquage des lignées cellulaires Le cytomètre en flux LSR commercialisé par BD a été utilisé pour 30 déterminer la fluorescence et le marquage cellulaire. Le logiciel FlowJo v.5.7.2 a été utilisé pour analyser les résultats. Pour le marquage, les cellules ont été lavées avec une solution de cPBS/0,5% BSA/ 0,1% sodium azide, détaché avec 1mg/mL de collagénase type 1 commercialisé par la société Gibco, Invitrogen, fixé et perméabilisé avec du Cytofix/Cytoperm commercialisé par BD, USA selon le protocole du fournisseur. 5 x 105 cellules ont été prises par tube et marquées avec un anticorps primaire dans un volume de 30p1 de cPBS, 0,1% BSA pendant au moins 45min à 4°C. Les cellules ont été lavées deux fois, suspendues dans 300p1 de cPBS et analysées par FACS. Les anticorps utilisés sont indiqués dans le tableau 3 suivant : Tableau 3 Compagnies Numéro Dilution catalogue Anticorps Polyclonal Abcam Ab3470 1/100 primaire de lapin Monoclonal Abcam Ab13248 1/100 de souris Polyclonal R et D AF3776 1/100 de chèvre Contrôle IgG de lapin Sigma 187765 0,016 isotype IgG de Sigma 15381 0,020 souris IgG de Sigma 15256 0,020 chèvre Anticorps Ane anti- lmmuno 711-116-152 1/100 secondaire lapin PE Research Chèvre anti Santa-Cruz SC-3738 1/100 souris PE Lapin anti Santa-Cruz SC-3755 1/100 chèvre PE B Résultats B.1 Caractérisation générale des cellules Les gels de transcrits d'ARNm issu des produits obtenus avec la RTPCR ont montrés que les cellules exprimaient les gènes CXCL16, SDF-1, CX3CL1, 6CKine, CTACK (données non fournies). Le gel issu de la PCR a montré que les cellules de la lignée MAgEC 11,5 exprimaient les gènes Kdr, F1t4 et CCR7 (colonnes 2, 4, 8, 10, 14 et 16, figure 16). Les cellules de la lignée MAgEC 10,5 exprimaient le gène Kdr (colonnes 1 et 2, figure 16). 10 Comme le montre la figure 8, qui représente des photographies de tests ELISA, toutes les cellules isolées selon le protocole décrit précédemment expriment les marqueurs vWf, ACE, et CD31 comme présenté dans l'exemple 1 précédent. Les cellules expriment également la VE-cadhérine qui est un marqueur de différentiation des cellules 15 endothéliales. Cet exemple démontre donc clairement que les cellules obtenues sont des cellules précurseurs de cellules endothéliales félines. De plus, comme démontré sur les figures 17 à 20, les lignées cellulaires MAgEC 10,5 et 11,5 n'expriment pas la chimiokine CCL27 (résultats non présentés) et produisent la chimiokine CXCL12 (figure 18). 20 La lignée cellulaire MAgEC 10,5 ne produit pas de VEGF, CCL17, CCL27 et CXCL1 (figures 17, 19 et 20). L'expression de CCL17 est constante dans les cellules de la lignée MAgEC 11,5 quelque soit les conditions (hypoxie ou normoxie) tandis que la production de CXCL1 est diminuée lorsque les cellules sont en condition hypoxiques. 25 B.2 Profils d'expression des lectines Les figures 9 à 12 représentant l'intensité de fluorescence en fonction des cellules démontrent clairement que l'expression des molécules de type galectine et collectine change durant le stade de développement. Le 30 niveau d'expression augmente à partir des cellules 10,5 dcp jusqu'à un pic pour les clones 6-1 (11,5 dcp) et une diminution dans les cellules des clones 4-3 (11,5 dcp). Tel que le montre les résultats obtenus, le niveau d'expression des lectines liant le rhamnose ne change pas entre les cellules indifférenciées des clones 6-1 et les cellules différenciées des clones 4-3. Ces résultats démontrent donc clairement que les récepteurs spécifiques du mannose-6P sont distribués ubiquitairement parmi les cellules de l'invention B. 3. Immunomarquage L'immunomarquage des cellules de l'invention a révélé la présence des marqueurs AGM PODXL et EphB4 dérivés des cellules, tel que représenté dans la figure 12. Par ailleurs, le cluster de différentiation CD34 a été exprimé de manière croissante à partir des cellules 10,5 dpc aux cellules 11,5 dpc. Exemple 3: criblage de molécules permettant l'identification de molécules susceptibles d'induire une différentiation et/ou une spécialisation d'une cellule isolée précurseur des cellules endothéliales Les cellules précurseurs de cellules endothéliales humaines et murines sont mises en culture dans des plaques 24 puits (Falcon, Grenoble, France). Le milieu de culture est l'OptiMEM (marque de commerce) commercialisé par la société Invitrogen supplémenté avec 2 % de Sérum Bovin Foetal (FCS) commercialisé par la société Hyclon, Longan, Utah, USA. Les cellules sont ensuite cultivées pendant 24 heures puis la molécule à cribler est introduite dans le milieu de culture. Les cellules sont ensuite cultivées pendant une durée allant de 24 à 48 heures à une température de 37 °C. Après 2 jours de culture, les cellules sont observées quant à leur viabilité, croissance, différentiation. Des photos des cellules en croissance peuvent être prises avec le microscope Axiovert S (marque de commerce) commercialisé par la société Zeiss Jena, Germany équipé avec une caméra digitale Fine Pix 5602 (marque de commerce) commercialisé par la société Fuji Film. Les observations montrent que les cellules ont soit subies une toxicité, soit une activation, soit une différentiation, etc. L'observation des cellules en croissance permet de mettre en évidence l'effet de la molécule ciblée. Une caractérisation des cellules est également effectuée avec des anticorps spécifiques de marqueurs de différentiation, tel que cela est présenté dans l'exemple 1 précité. Cette caractérisation démontre clairement que les cellules expriment des marqueurs de cellules endothéliales différenciées, ou bien font de l'angiogenèse, ou bien croissent plus vite, ou bien évoluent vers d'autres lignées telles que les adipocytes, muscles lisses, os, etc., indiquant que la molécule criblée induit une stimulation, apoptose ou différentiation. Exemple 4: adressage de cellules précurseurs au niveau de site pathologiques Les cellules précurseurs utilisées dans cet exemple sont les cellules isolées des exemples 1 et 2 précités. Afin de confirmer l'adressage des cellules précurseurs de cellules endothéliales au niveau de sites pathologiques, dans le cas présent au niveau de tumeurs, des expériences d'imagerie in vivo sont conduites. Des souris tumorales sont obtenues par injection de 105 cellules de mélanome B16-F10 au niveau sous cutané, au-dessus de la patte, afin de former des tumeurs. Les souris utilisées sont de la race C57 BI6. Les souris obtenues constituent des modèles tumoraux. La vérification de la présence des tumeurs est effectuée par mesure visuelle et matérielle de la taille de la tumeur. Les cellules précurseurs de cellules endothéliales sont marquées avec le colorant DiD Vybrant (marque enregistrée) commercialisé par la société Molecular Probes USA Après coloration, les cellules marquées sont injectées dans les souris porteuses de tumeurs. L'acquisition des images est faite avec un appareil de mesure de la fluorescence dans le proche Infra Rouge, au Centre d'Imagerie du Petit Animal (CIPA) CNRS, Orléans, France. Les images obtenues montrent clairement un adressage des cellules au niveau des tumeurs. Par ailleurs, les résultats obtenus montrent que les cellules ont été incorporées dans les tumeurs. Une expérience similaire est effectuée chez des souris ayant subit un infarctus du myocarde. Les souris utilisées sont identiques aux souris précitées et les cellules précurseurs de cellules endothéliales sont marquées selon le procédé décrit précédemment. L'infarctus est provoqué par lésion d'une coronaire chez la souris. Après l'infarctus, les cellules précurseurs de cellules endothéliales marquées sont injectées dans les souris ayant subies un infarctus. La révélation des cellules est faite telle qu'indiquée précédemment. Les images obtenues montrent clairement un adressage des cellules au niveau des tumeurs et également au niveau des tissus endommagés par l'infarctus. Par ailleurs, les résultats obtenus montrent que les cellules sont incorporées dans les tumeurs et permet la restauration des tissus endommagés et la cicatrisation. Tel que le démontre cet exemple, les cellules isolées précurseurs de cellules endothéliales selon l'invention, ciblent les tumeurs ainsi que les tissus endommagés. Aussi, ces cellules peuvent être utilisées, par exemple pour le traitement de lésions tissulaires, pour l'adressage de molécules thérapeutiques, par exemple au niveau de tumeurs et pour le traitement de cellules génétiquement déficientes. Listes des références 1. Arbab AS, Pandit SD, Anderson SA, et al. Magnetic resonance imaging and confocal microscopy studies of magnetically labeled endothelial progenitor cells trafficking to sites of tumor angiogenesis. Stem Cells. 2006;24:671-678 2. de Jonge-Peeters SD, Kuipers F, de Vries EG, Vellenga E. « ABC transporter expression in hematopoietic stem cells and the role in AML drug resistance. » Crit Rev Oncol Hematol. 2007 Jun; 10 62(3):214-26. Epub 2007 Mar 23. 3. Slayton WB, Li XM, Butler J, Guthrie SM, Jorgensen ML, Wingard JR, Scott EW. « The role of the donor in the repair of the marrow vascular niche following hematopoietic stem cell transplant. » Stem Cells. 2007 Nov;25(11):2945-55 15 4. Dome B, Timar J, Ladanyi A, et al. Circulating endothelial cells, bone marrow-derived endothelial progenitor cells and proangiogenic hematopoietic cells in cancer: From biology to therapy. Crit Rev Oncol Hematol. 2009;69:108-1241 5. Yamahara K, Itoh H. Potential use of endothelial progenitor cells 20 for regeneration of the vasculature. Ther Adv Cardiovasc Dis. 2009;3:17-27. 6. Suh W, Kim KL, Kim JM, et al. Transplantation of endothelial progenitor cellsaccelerates dermal wound healing with increased recruitment of monocytes/macrophages and neovascularization. 25 Stem Cells. 2005;23:1571-1578. 7. Slayton WB, Li XM, Butler J, et al. The role of the donor in the repair of the marrowvascular niche following hematopoietic stem cell transplant. Stem Cells.2007;25:2945-2955 8. Shi Q, Rafii S, Wu MH, et al. Evidence for circulating bone 30 marrow-derived endothelial cells. Blood. 1998;92:362-367 9. Lin Y, Weisdorf DJ, Solovey A, et al. Origins of circulating endothelial cells and endothelial outgrowth from blood. J Clin Invest. 2000;105:71-77. 10. Peichev M, Naiyer AJ, Pereira D, et al. Expression of VEGFR-2 and AC133 by circulating human CD34(+) cells identifies a population of functional endothelial precursors. Blood. 2000;95:952-958. 11. Case J, Mead LE, Bessler WK, Prater D, White HA, Saadatzadeh MR, Bhavsar JR, Yoder MC, Haneline LS, lngram DA « Human CD34+AC133+VEGFR-2+ cells are not endothelial progenitor cells but distinct, primitive hematopoietic progenitors. » Exp Hematol. 2007 Oct;35(10):1479-80 12. Asahara T, Murohara T, Sullivan A, Silver M, van der Zee R, Li T, Witzenbichler B, Schatteman G, lsner JM. « Isolation of putative progenitor endothelial cells for angiogenesis » Science. 1997 Feb 14;275(5302):964-7 13. Szyda A, Paprocka M, Krawczenko A, et al. Optimization of a retroviral vector for transduction of human CD34 positive cells. Acta Biochim Pol. 2006;53:815-823. 14. Kieda C, Paprocka M, Krawczenko A, Zatecki P, Dupuis P, Monsigny M, Radzikowski C, Du D., New human microvascular endothelial cell lines with specific adhesion molecules phenotypes. Endothelium. 2002;9(4):247-61. REVENDICATIONS1. Cellule isolée humaine précurseur des cellules endothéliales, autre que les cellules souches embryonnaires, les dites cellules isolées comprenant les clusters de différentiation (CD) 133, 13, 271, 90 202b, 309, 146, 105 et 143; et ne comprenant pas les clusters de différentiation CD 31 et CD 45. 2. Cellule isolée humaine précurseur de cellules endothéliales choisie parmi les cellules déposées à la Collection Nationale de Culture de Microorganismes 10 (CNCM), sous les numéros CNCM n° 1-4220, n°1-4221. 3. Cellule isolée murine précurseur de cellule endothéliale choisie parmi les cellules déposées à la Collection Nationale de Culture de Microorganismes (CNCM), sous les numéros CNCM n° 1-4222 n° 1-4223. 15 4. Cellule isolée selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, dans laquelle ladite cellule forme une lignée cellulaire établie. 5. Procédé de criblage de molécules susceptibles d'induire une 20 différentiation et/ou une spécialisation d'une cellule isolée selon l'une quelconque des revendications 1 à 4 comprenant les étapes suivantes : introduction de la molécule à cribler dans un milieu adapté à la culture de ladite cellule, introduction d'au moins une cellule isolée selon l'une quelconque des 25 revendications 1 à 4 dans ledit milieu, culture de ladite cellule dans ledit milieu pendant un temps suffisant pour permettre sa différentiation et/ou sa spécialisation, _ prélèvement d'au moins une cellule issue de ladite culture, observation de la prolifération ou non différentiation et/ou spécialisation 30 de ladite cellule par observation phénotypique de la cellule et/ou par révélation de marqueurs de différentiation. 6. Procédé selon la revendication 5, dans lequel la révélation de marqueurs de différentiation est effectuée au moyen d'anticorps spécifiques desdits marqueurs. 7. Procédé selon la revendication 5 ou 6, dans lequel lesdites molécules induisent une différentiation et/ou spécialisation conduisant à l'angiogenèse. 8. Procédé selon l'une quelconque des revendications 5 à 7, dans lequel l'étape d'identification du phénotype et/ou des marqueurs permet de connaître l'effet de la molécule criblée sur la cellule isolée cultivée. 9. Kit de mise en oeuvre du procédé selon la revendication 5 comprenant : au moins une cellule isolée selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, et un moyen de détection de la différentiation et/ou spécialisation cellulaire. 10. Culture cellulaire comprenant une cellule isolée selon l'une quelconque 20 des revendications 1 à 4. 11. Cellule isolée selon l'une quelconque des revendications 1 à 4 pour l'utilisation comme médicament. 25 12. Utilisation d'une cellule isolée selon l'une quelconque des revendications 1 à 4 pour la fabrication d'un médicament. 13. Utilisation d'une cellule isolée selon la revendication 12, dans laquelle le médicament est destiné au traitement des cellules génétiquement déficientes, des 30 lésions tissulaires, des dommages endothéliaux, des dommages dus à l'ischémie, l'infarctus, les tumeurs, le diabète.