Brevet FR3007038A1 — publié le 20141219

POLYPEPTIDE AYANT LA CAPACITE DE FORMER DES BRANCHEMENTS D'UNITES GLUCOSYLE EN ALPHA-1,3 SUR UN ACCEPTEUR DOMAINE DE L'INVENTION La présente invention concerne un polypeptide isolé ayant la capacité de former des branchements d'unités glucosyle en alpha-1,3 sur un accepteur, un polynucléotide codant ledit polypeptide, son utilisation dans un procédé de production d'accepteurs branchés d'unités glucosyle en alpha-1,3, lesdits accepteurs branchés d'unités glucosyle en alpha-1,3 ainsi que l'utilisation de ces derniers. ART ANTERIEUR Les glucosyltransférases sont des enzymes capables de catalyser la synthèse de polymères de glucose à partir d'un substrat peu coûteux, notamment le saccharose, seul ou en présence d'un accepteur d'unités glucosyle comprenant au moins un groupement hydroxyle. Au sein de ces molécules acceptrices, les unités glucosyle sont couplées par des liaisons osidiques de nature variable (a-1,6, a-1,4, a-1,2 ou a-1,3). Les transglucosylases (ou glucane-saccharases) appartenant à la famille 70 des Glycoside-Hydrolases (base de données : Carbohydrate Active Enzymes database (http://www.cazy.org/) et CANTAREL et al., Nucleic Acids Res, vol. 37, p:D233-238 2009) et constituent des enzymes naturellement produites par les bactéries lactiques des genres Leuconostoc, Lactobacillus, Streptococcus ou Weissela. A partir de leur substrat, notamment de saccharose, substrat renouvelable et bon marché, ces enzymes catalysent la synthèse d'homopolymères d'unités glucosyle (glucanes) généralement de très haute masse molaire et présentant des structures variées (liaisons osidiques a-1,6/ a-1,4/ a-1,2 et/ou a-1,3). De plus, si des molécules hydroxylées sont rajoutées au milieu réactionnel en plus du donneur d'unités glucosyle, ces enzymes peuvent également glucosyler ces molécules au détriment de la synthèse de polymère, donnant lieu à une large gamme d'oligosaccharides et/ou de gluco-conjugués. Des travaux décrits dans JEANES et al. (1954), décrivant la purification et la caractérisation de glucanes produits par 96 souches de Leuconostoc sp., on connait ceux 1 produit par la souche Leuconostoc mesenteroides NRRL B-742 (également retrouvée sous L. mesenteroides ATCC 13146, et depuis reclassée en L. citreum NRRL B-742). En effet, celle-ci produit deux types de glucanes : la fraction S et la fraction L. Le premier glucane est composé à 50% de liaisons a-1,6 dans sa chaine principale et à 50% de branchements en a-1,3 (fraction S). Les études successives de ce dernier glucane décrites dans JEANES & SEYMOUR (Carbohydrate Research, vol.74, p :31-40), COTE & ROBYT (Carbohydrate Research, vol.119, p :141-156, 1983) et REMAUD et al. (J. Carbohydrate Chemistry, vol.11(3), 1992) montrèrent que celui-ci présentait une structure originale en forme de peigne. Plus spécifiquement, chaque unité glucosyle de la chaine linéaire au sein de cette structure se trouvait ramifiée en a -1,3 par une seule unité glucosyle. Le second glucane (fraction L) produit par cette même souche se trouvait lui composé à 73% de liaisons a-1,6 et à 14% de liaisons a-1,4 aux points de ramifications (SEYMOUR et al., Carbohydrate Research, vol.74, p :41-62, 1979). Ces différents travaux ont permis de montrer que la souche de L. citreum NRRL B-742 possède plusieurs gènes codant pour des transglucosylases responsables de la synthèse de glucanes ; lesquelles présentent des spécificités différentes. En présence d'extraits de cette souche, il a été ainsi possible de produire des gluco-oligosaccharides qui se sont révélés avoir de fortes propriétés prébiotiques stimulant la croissance de Bifidobacterium sp. et de Lactobacillus sp. par exemple (CHUNG & DAY, Journal of Industrial Microbiology & Biotechnology, vol.29, p :196-199, 2002 ; CHUNG & DAY, Poultry Science, vol.83, p :1302-1306, 2004 ; brevet US 7,772,212). Maintenant, et bien que cette souche soit connue depuis plus de cinquante ans, les enzymes responsables de la synthèse de ces glucanes ne sont toujours pas connues. Il faut en effet comprendre que si certaines de ces enzymes sont extracellulaires ; d'autres, au contraire, restent fortement associées aux cellules, notamment l'enzyme responsable des glucanes à forte teneur en liaisons a-1,3 (REMAUD et al., 1992). De cette forte association aux cellules bactériennes, il en résulte que sa purification et sa caractérisation fine n'ont pu être effectuées. En 2000, KIM et al. décrivirent le clonage chez E. coli d'une transglucosylase issue de cette souche, appelée DsrB-742. La caractérisation du gène en question 2 montrait que celui-ci présentait 95% de similarité avec celui de la DSR-B déjà caractérisée chez L citreum NRRL B-1299 et présentait une activité de type a-1,6, mais aucune activité de type a-1,3. Finalement, l'identification et la caractérisation biochimique de l'enzyme 5 responsable de la synthèse des glucanes (S) de type peigne composés à 50% de branchements en a-1,3 restait donc totalement infructueuse jusqu'à présent. DESCRIPTION DES DESSINS La figure 1 montre la structure primaire de la protéine. La figure 2 montre des profils d'analyses chromatographiques par HPAEC- 10 PAD. La figure 3 montre un profil RMN. La figure 4 montre des profils d'analyses chromatographiques par HPAEC- PAD. La figure 5 montre l'évolution du taux de liaisons a-1,3 en fonction du rapport 15 saccharose/accepteur hydroxylé. La figure 6 montre un spectre RMN. SOMMAIRE DE L'INVENTION Les inventeurs ont maintenant mis en évidence que la synthèse des dextranes en peigne par la souche L. citreum NRRL B-742 était due à l'action non d'une mais de 20 deux transglucosylases distinctes : une responsable de la synthèse d'un dextrane linéaire, puis l'autre responsable des branchements en a -1,3 sur ces chaines linéaires qui jouent le rôle de molécules acceptrices. Les inventeurs ont donc mis en évidence un polypeptide présentant une activité enzymatique encore jamais décrite, laquelle est responsable de branchements spécifiques d'unités glucosyle en a-1,3 sur des molécules 25 acceptrices, par exemple de type dextranes. A noter en outre que les inventeurs ont été capables de contrôler le taux de branchement de ces unités glycosyle. 3 Il s'agit donc de la première enzyme de branchement naturelle décrite pour une transglucosylase qui par analyse de séquence se classe dans la famille GH-70. Par ailleurs, la synthèse de polysaccharides branchés avec des taux contrôlés d'unités glucosyle liées en alpha-1,3 n'a jamais été décrite, et aucun produit branché de ce type n'existait sur le marché jusqu'alors. Ce type de liaisons en alpha-1,3 confère une résistance à l'action d'enzymes de dégradation telles que des glycoside-hydrolases comme par exemple les dextranases, glucoamylases, amylases et en particulier les enzymes digestives de l'appareil intestinal humain augmentant ainsi la durée de vie de la molécule acceptrice à laquelle elles sont associées, et attribuant aux gluco-oligosaccharides de nouvelles propriétés physicochimiques et/ou prébiotiques intéressantes sur le plan des applications industrielles. Les prébiotiques sont des ingrédients alimentaires non digestibles qui arrivent intacts dans le colon où ils sont alors spécifiquement métabolisés par une certaine catégorie du microbiote intestinal (humain ou animal) dite « bénéfique ». Comparativement aux probiotiques, les prébiotiques prennent l'avantage sur les probiotiques sur le marché des alicaments, notamment grâce à une meilleure résistance à la barrière digestive, des coûts de production potentiellement moins chers, et une plus grande facilité à être incorporés aux préparations alimentaires. Outre leur action sur les flores intestinales, les molécules dites prébiotiques peuvent également être métabolisées par d'autres flores commensales, telles que les flores cutanées ou vaginales, et participer au développement d'une flore dite « bénéfique » selon les mêmes principes que ceux cités ci-dessus. Parmi ces prébiotiques, on classe -d'un point de vue commercial- sous le nom d'isomaltooligosaccharides tous les oligosaccharides de glucose composés majoritairement de liaisons a -1,6 dans la chaine principale et de taux variables en liaisons a -1,4 ; a -1,3 et/ou a -1,2. On les trouve naturellement dans divers produits fermentés tels que le miro, sake, la sauce soja ou le miel. Ils peuvent être produits industriellement par des hydrolysats d'amidon à l'aide d'a-transglucosylases. Dans ce cas, les IMOS contiennent exclusivement des liaisons a-1,6 et a-1,4. Or, ces produits peuvent également être synthétisés par réaction d'accepteur à l'aide des 4 transglucosylases de la famille GH-70. Dans ce cas, les produits peuvent aussi contenir des liaisons a-1,3 ou a-1,2 en plus des a-1,6 et a-1,4, en fonction de la spécificité de liaison de la glucane-saccharase employée. Ces liaisons (a-1,3 ou a-1,2) sont plus rares dans la nature, et confèrent aux molécules des propriétés prébiotiques particulièrement intéressantes, car encore plus difficilement digestibles que les autres IMOS (notamment par certains pathogènes qui peuvent partiellement reconnaitre les a-1,6/a -1,4 IMOS). La découverte faite par les inventeurs permet d'envisager la synthèse d'une large variété de nouveaux polysaccharides présentant des structures et des propriétés nouvelles et contrôlées. Ainsi, les inventeurs ont démontré que le produit obtenu suivant la réaction de leur enzyme en présence de saccharose et d'un dextrane linéaire d'un poids moléculaire de 1500 Da permet d'obtenir un polysaccharide présentant une résistance améliorée à l'action d'enzymes digestives. Les propriétés de ce nouveau polysaccharide en tant que prébiotique sont donc susceptibles d'être comparables à celles des isomaltooligosaccharides ou des glucooligosaccharides branchés en a-1,2. Finalement, de tels nouveaux polysaccharides pourraient trouver une utilisation en tant que prébiotiques ou en tant que biopolymères, dans la préparation de formulations industrielles. Parmi les biopolymères, les polysaccharides (surtout d'origine végétale, mais également de plus en plus d'origine microbienne) peuvent être utilisés comme agents texturants ou stabilisants pour divers types de produits industriels. Un exemple d'utilisation de ces biopolymères comprend la préparation de bioplastiques facilement dégradables. Ils pourraient alors remplacer l'usage de polymères d'origine synthétique. DESCRIPTION DETAILLEE DE L'INVENTION Un premier objet de l'invention concerne un polypeptide isolé ayant la capacité de former des branchements d'unités glucosyle en alpha-1,3 sur un accepteur comprenant au moins un groupement hydroxyle et caractérisé en ce que ledit polypeptide comprend : 1) Le motif I de séquence SEQ id n°1 (ADFVANQ) 2) Le motif II de séquence SEQ id n°2 (SMRIDAISFVD) 5 ) Le motif III de séquence SEQ id n°3 (HISIVEAPKGE) 4) Le motif IV de séquence SEQ id n°4 (IVHAHDKDIQDTVIH) ou des dérivés d'un ou plusieurs desdits domaines ; lequel polypeptide présente en outre le résidu aspartique (D) en position 5 du motif II (SEQ id n°2), le résidu glutamique (E) en position 6 du motif III (SEQ id n°3) et le résidu aspartique (D) en position 6 du motif IV (SEQ id n°4). Ces trois derniers acides aminés peuvent être aisément identifiés par l'homme du métier, au regard des homologies de séquences entre les enzymes présentant des activités analogues, comme représentant la « triade catalytique » essentielle pour l'activité transglucosylase des enzymes de la famille GH 70 (LEEMHUIS et al' Journal of Biotechnology, vol.163(2), p: 250-72, 2013). . De manière préférée, un polypeptide selon l'invention est un polypeptide comprenant la séquence SEQ id n°5 (positions 636 à 1270 de la séquence SEQ id n°9, domaines A et C + une partie du domaine B) un orthologue, un dérivé, ou un fragment de celle-ci, de préférence comprenant la séquence SEQ id n°6 (positions 586 à 1284 de la séquence SEQ id n°9, comprenant l'intégralité des domaines A, B et C), un orthologue, un dérivé, ou un fragment de celle-ci. Avantageusement encore, un polypeptide selon l'invention est un polypeptide comprenant la séquence SEQ id n°7 (positions 446 à 1356 de la séquence SEQ id n°9, domaines A, B, C et IV) un orthologue, un dérivé, ou un fragment de celle-ci, de préférence comprenant la séquence SEQ id n°8 (positions 403 à 1606 de la séquence SEQ id n°9, domaines A, B, C, IV et V selon homologie avec la transglucosylase GTF180 de L. reuteri 180), un orthologue, un dérivé, ou un fragment de celle-ci. Finalement, un polypeptide selon l'invention est un polypeptide comprenant ou 25 consistant en la séquence SEQ id n°9 (séquence entière de l'enzyme), un orthologue, un dérivé, ou un fragment de celle-ci. La séquence SEQ id n°9 correspond à un polypeptide selon l'invention isolé de la souche Leuconostoc citreum NRRL B-742 (ATCC 13146), antérieurement appelé Leuconostoc mesenteroides NRRL B-742. 6 Par « orthologue », on entend un polypeptide présentant la même activité que celle du polypeptide de séquence SEQ id n°9 de la souche Leuconostoc citreum NRRL742 ; lequel polypeptide présente une séquence en acides aminés qui diffère d'au moins un résidu avec la séquence SEQ id n°9 et a été isolé à partir d'une souche autre 5 que celle énoncée précédemment. Plus généralement, on entend par orthologue, un polypeptide présentant la même activité que celle du polypeptide de séquence SEQ id n°9 isolé à partir d'une souche bactérienne donnée qui descend de la même séquence unique que le polypeptide de séquence SEQ id n°9 isolé à partir de la souche Leuconostoc citreum NRRL B-742, laquelle séquence unique est issue du dernier 10 ancêtre commun à ces deux souches. Avantageusement, cet orthologue a été isolé à partir d'une souche bactérienne appartenant à la famille Leuconostocaceae, laquelle comprend les genres Leuconostoc, Oenococcus et Weissela. Maintenant, cet orthologue est préférentiellement isolé à partir d'une souche bactérienne appartenant au genre Leuconostoc, voire appartenant au 15 groupe consistant en les espèces Leuconostoc argentinum, Leuconostoc carnosum, Leuconostoc citreum, Leuconostoc cremoris, Leuconostoc dextranicum, Leuconostoc fallax, Leuconostoc fructosum, Leuconostoc gasicomitatum, Leuconostoc gelidum, Leuconostoc inhae, Leuconostoc kimchii, Leuconostoc lattis, Leuconostoc mesenteroides, Leuconostoc paramesenteroides et Leuconostoc pseudomesenteroides. 20 Plus simplement, un tel orthologue devra présenter une identité de séquence d'au moins 60% avec la séquence SEQ id n°9, de préférence d'au moins 65%, 70%, 75%, 80% ou 85%, et de manière encore plus préférée d'au moins 90%, 95%, 97%, 98% ou 99% avec la séquence SEQ id n°9. Par « dérivé », on fera référence à un polypeptide dont la séquence présente un 25 pourcentage d'identité d'au moins 80 %, par exemple d'au moins 85%, de préférence d'au moins 90%, et de manière particulièrement préférée d'au moins 95% avec un polypeptide selon l'invention, de préférence avec un polypeptide de séquence SEQ id n°9. Naturellement, un tel dérivé présentera l'activité enzymatique décrite 30 précédemment. 7 Par "pourcentage d'identité entre deux séquences polypeptidiques", on entend le pourcentage d'acides aminés identiques, entre deux séquences devant être comparées, obtenu avec le meilleur alignement possible desdites séquences. Ce pourcentage est purement statistique et les différences entre les deux séquences sont réparties aléatoirement sur toute la longueur des séquences d'acides aminés. Par "meilleur alignement possible ou alignement optimal", on entend l'alignement permettant d'obtenir le pourcentage d'identité le plus élevé. Les comparaisons de séquences entre deux séquences d'acides aminés sont habituellement réalisées en comparant lesdites séquences après que celles-ci aient été alignées selon le meilleur alignement possible ; la comparaison est alors réalisée sur des segments de comparaison de façon à identifier et comparer des régions de similarité. Le meilleur alignement possible pour effectuer une comparaison peut être réalisé en utilisant l'algorithme d'alignement local développé par SMITH & WATERMAN (Ad. App. Math., vol.2, p:482, 1981), en utilisant l'algorithme d'alignement global développé par NEDDLEMAN & WUNSCH Mol. Biol., vol.48, p:443, 1970), en utilisant la méthode de similarité développé par PEARSON & LIPMAN (Proc. Natl. Acd. Sci. USA, vol.85, p:2444, 1988), en utilisant des programmes d'ordinateur basés sur de tels algorithmes (GAP, BESTFIT, BLAST P, BLAST N, FASTA, TFASTA, Genetics Computer Group, 575 Science Dr., Madison, WI USA), en utilisant les algorithmes d'alignements multiples MUSCLE (Edgar, Robert C., Nucleic Acids Research, vol. 32, p:1792, 2004) ou CLUSTAL (Goujon M, McWilliam H, Li W, Valentin F, Squizzato S, Paern J, Lopez R. Nucleic acids research 2010 Jul, 38 Suppl: W695-9). Pour obtenir le meilleur alignement possible, on utilisera de préférence le programme BLAST avec la matrice BLOSUM 62 ou la matrice PAM 30. Le pourcentage d'identité est déterminé en comparant les deux séquences alignées de façon optimale, lesdites séquences pourront comprendre des additions ou des délétions au regard de la séquence de référence de sorte d'obtenir le meilleur alignement possible entre ces deux séquences. Le pourcentage d'identité est calculé en déterminant le nombre de positions identiques entre les deux séquences, en divisant le nombre obtenu par le nombre total de positions comparées et en multipliant le résultat obtenu par 100 pour obtenir le pourcentage d'identité entre ces deux séquences. 8 Par « fragment », on entend un polypeptide comprenant les 4 motifs tels que décrits précédemment et présentant une séquence d'au moins 150 acides aminés, à titre d'exemple d'au moins 450 acides aminés, à titre d'exemple d'au moins 700 acides aminés, et de manière particulièrement préférée un polypeptide d'au moins 1 000 acides aminés. Les termes "acide aminé" et "acides aminés" au sens de la présente invention correspondent à tout acide aminé présent naturellement ou à leurs résidus. Les acides aminés peuvent être identifiés soit par leur abréviation à une seule lettre, soit par leur abréviation à trois lettres. (Asp D acide aspartique ; Ile I isoleucine ; Thr T threonine ; Leu L leucine ; Ser S serine ; Tyr Y tyrosine ; Glu E acide glutamique ; Phe F phenylalanine ; Pro P proline ; His H histidine ; Gly G glycine ; Lys K lysine ; Ala A alanine ; Arg R arginine ; Cys C cysteine ; Trp W tryptophane ; Val V valine ; Gln Q glutamine ; Met M methionine ; Asn N asparagine). Selon la présente invention, les acides aminés naturels peuvent être remplacés par des acides aminés chimiquement modifiés. La détermination de l'activité enzymatique du polypeptide selon l'invention peut être déterminée par des méthodes connues de l'Homme de l'art, telle que par utilisation de la technique de Chromatographie Liquide à Haute performance sur des produits de la réaction avec le polypeptide selon l'invention (MOULIS et al., J Biol.Chem, 2006) ou dosage des sucres réducteurs par la méthode à l'acide dinitrosalycilique (SUMNER & HOWELL, 1935). Plus spécifiquement, cette activité enzymatique est exprimée en unité glucane-saccharase qui représente la quantité d'enzyme qui libère une umole de fructose par minute, à 30 °C, avec une concentration de 100 g.L-1 de saccharose et dans un tampon à pH 5,2 comprenant 50mM acétate de sodium. Cette activité est déterminée préférentiellement par la mesure de la vitesse initiale de production des sucres réducteurs (fructose) à l'aide de la méthode du DNS (SUMNER & HOWELL). Pour se faire, une gamme étalon de 0 à 2 g.L-1 de fructose est réalisée. Au cours d'une cinétique, 100 lai de milieu réactionnel sont ensuite prélevés et la réaction est stoppée par ajout d'un volume équivalent de réactif. Les échantillons sont ensuite chauffés 5 min à 95°C, refroidis dans la glace, dilués au demi dans l'eau et l'absorbance est lue à 540 nm. 9 Le polypeptide est "isolé" au sens de la présente invention en ce sens qu'il a été soustrait à son environnement originel (l'environnement dans lequel il est localisé naturellement). Par exemple, un polypeptide présent à l'état naturel dans une cellule n'est pas isolé. Le même polypeptide séparé des autres polypeptides adjacents au sein de la cellule dans laquelle il est naturellement présent, le plus couramment par un procédé de purification, est isolé. Selon un mode de réalisation préféré, le substrat du polypeptide selon l'invention est choisi dans le groupe comprenant l'a-D-glucopyranosyl fluoride, le pnitrophenyl a-D-glucopyranoside, le a-D-glucopyranosyl a-L-sorofuranoside, le lactulosucrose et le saccharose, de préférence le saccharose qui est le substrat naturel. Le « saccharose » est constitué d'une unité a-D-glucopyranosyle et d'une unité p-D-fructofuranosyle associées par une liaison (alphal -béta2). L'hydrolyse du saccharose conduit à un mélange de glucose et de fructose. On entend par « unité glucosyle » le résidu provenant du clivage du saccharose 15 qui se trouve associé temporairement à l'enzyme sous la forme d'un f3-glucosyl-enzyme et qui est transféré sur un accepteur comprenant un groupement hydroxyle par formation d'une liaison osidique avec ce groupement hydroxyle. On entend par « branchement en alpha-1,3 » selon l'invention une liaison glucosidique de condensation entre la fonction -OH du carbone située en position 1 20 d'un premier sucre et une fonction -OH du carbone située en position 3 d'un autre sucre, ladite liaison glucosidique étant formée dans une configuration alpha. L'expression « branchement d'unités glucosyle en alpha-1,3 » fait référence à une liaison glucosidique en alpha-1,3 entre un accepteur selon l'invention comprenant au moins un groupement hydroxyle et une unité glucosyle issue de l'hydrolyse du 25 saccharose par le polypeptide selon l'invention. Le terme « accepteur » selon l'invention fait référence à toute molécule organique comprenant au moins un groupement hydroxyle (-OH) libre, lequel accepteur est ajouté dans le milieu réactionnel en complément du substrat donneur d'unités glucosyle. Un tel accepteur peut être choisi parmi les accepteurs glucidiques et non 30 glucidiques. 10 Des exemples d'accepteurs non glucidiques comprennent de manière non limitative les alcools, les polyols, les composés phénoliques ou encore les acides aminés. Des exemples d'accepteurs glucidiques sont avantageusement des 5 polysaccharides ou plus généralement des accepteurs comprenant des unités glycosyle. Selon un mode de réalisation préférée, un accepteur selon l'invention est un accepteur glucidique, de préférence celui-ci comprendra des unités glucosyle. Toujours selon un mode de réalisation préférée, un accepteur selon l'invention comprend les polysaccharides. Par polysaccharide, on entend un polymère de sucres 10 comprenant n unités de sucres où n est entier supérieur ou égal à 3. Avantageusement, ces polysaccharides sont composés exclusivement de monomères de glucose (glucanes), et ils peuvent être linéaires ou bien ramifiés. Ces polysaccharides peuvent correspondre soit à des a-glucanes, soit à des 13-glucanes. Les a-glucanes sont des polymères de glucose liés entre eux en position a. A 15 titre d'exemple d'a-glucanes, on peut citer le dextrane (plus de 50% de liaisons a-1,6 dans la chaine principale), le dextrane ramifié en a-1,2 (par action d'une a-1,2 « branching sucrase »), l'alternane (liaisons a-1,6 et a-1,3 alternées dans la chaine principale), le mutane (plus de 50% de liaisons a-1,3), le reuterane (liaisons a-1,4 et a1,6 dans la chaine principale), l'amidon (a-1,4- et a-1,6-glucane), l'amylopectine (a- 20 1,4- et a-1,6-glucane), l'amylose (a-1,4-glucane), le glycogène (a-1,4- et a-1,6-glucane) et le pullulane (a-1,4- et a-1,6-glucane). Les [3-glucanes sont des polymères de glucose liés entre eux en position p. A titre d'exemple de f3-glucanes, on peut citer la cellulose ((3-1,4-glucane), le curdlan (f3- 1,3-glucane), le laminarin (p-1,3- et (3-1,6-glucane), le lentinane ([3-1,6:(3-1,3-glucane), 25 le pamylon, le pleurane (f3-1,3- et f3-1,6-glucane) et le zymosan (f3-1,3-glucane). Maintenant, un accepteur préféré serait un a-glucane comme l'amylose, l'amidon, l'amylopectine, le dextrane, le glycogène ou le pullulane, les dextranes ramifiés en a-1,2, l'alternane, le mutane et le reuterane. Selon un mode de réalisation particulièrement préféré, un accepteur selon 30 l'invention est un dextrane, polymère dont les unités glucosyle sont reliées entre elles 11 par des liaisons alpha 1-6. Ce polymère peut également comprendre des ramifications constituées de liaisons alpha-1,2 ou -1,3 ou -1,4. Les dextranes utilisés en tant qu'accepteur selon l'invention présentent un poids moléculaire (PM) compris entre 300 et le Dalton (Da), de préférence entre 103 et 109 Da et de manière encore plus préférée entre 1000 et 2.106 Da. L'avantage présenté par l'invention consiste en ce que le polypeptide tel que décrit précédemment est responsable de la formation de branchement d'unités glucosyle en position alpha-1,3 sur un accepteur. De manière préférée, le polypeptide selon l'invention a la capacité de former des 10 branchements d'unités glucosyle en alpha-1,3 sur un accepteur à un taux compris entre 1 et 50%, de préférence entre 5% et 40%, et manière plus préférée encore entre 10 et 40%. De manière préférée encore, le polypeptide selon l'invention a la capacité de former des branchements d'unités glucosyle en alpha-1,3 sur un accepteur à un taux 15 maximal de 50%. Un autre objet de l'invention concerne un polynucléotide isolé codant pour un polypeptide tel que défini précédemment, un fragment ou un dérivé de celui-ci. Selon l'invention, ledit polynucléotide est une molécule d'ADN ou d'ARN. Le terme "polynucléotide" se réfère de façon large à une molécule d'ADN 20 comme par exemple un ADNc (ADN complémentaire) ou de l'ADN génomique ou synthétique, ou à une molécule d'ARN, comme par exemple un ARN messager ou encore de l'ARN synthétique, aussi bien qu'à des analogues d'ADN ou ARN contenant des analogues de nucléotides non naturels, des liens internucléotidiques non naturels ou encore les deux. De manière préférée, ledit polynucléotide est une molécule d'ADN. 25 Les polynucléotides peuvent présenter toute conformation topologique, telle que linéaire ou circulaire. Dans un mode de réalisation préférée de l'invention, ledit polynucléotide est défini par la séquence SEQ id n°10. Un autre objet de l'invention concerne un vecteur d'expression comprenant 30 un polynucléotide tel que décrit précédemment. 12 On entend par « vecteur » tout véhicule capable de faciliter le transfert d'un polynucléotide dans une cellule. De manière générale, les vecteurs selon l'invention incluent, sans limitation, les plasmides, cosmides, phagemides ou tout autre véhicule dérivé de sources virales ou bactériennes qui ont été manipulées pour l'insertion ou incorporation d'une séquence nucléotidique. Le choix des vecteurs utilisables dans le cadre de la présente invention est vaste. Il peut s'agir de vecteurs de clonage et/ou d'expression. D'une manière générale, ils sont connus de l'homme de l'art et nombre d'entre eux sont disponibles commercialement mais il est également possible de les construire ou les modifier par les techniques de manipulation génétique. De manière préférée, les vecteurs selon l'invention sont des vecteurs plasmidiques, également appelés plasmides. Les plasmides ont été largement décrits dans l'art antérieur et sont bien connus de l'Homme du métier (voir par exemple SANBROOK et al., "Molecular Cloning: A Laboratory Manual," Second Edition, Cold Spring Harbor Laboratory Press, 1989). A titre d'exemples, on peut citer les plasmides les plus communément utilisés tels que pBR322, pUC18, pUC19, pRC/CMV, SV40, et pBlueScript, pET-53-DEST, pET-55-DEST, pBAD49-DEST, pET-60-DEST. Les plasmides peuvent être conçus par l'utilisation d'enzymes de restriction et de réactions de ligation ou de systèmes de recombinaison pour éliminer ou ajouter des fragments d'ADN spécifiques. Les plasmides dans lesquels sont insérées les séquences nucléotidiques sont sous forme d'un ADN simple ou double brin, linéaire ou circulaire. De préférence, un vecteur mis en oeuvre dans le cadre de la présente invention contient une origine de réplication assurant l'initiation de la réplication dans une cellule productrice et/ou une cellule hôte. Il comprend également les éléments nécessaires à l'expression d'un polynucléotide de l'invention, tels qu'un promoteur et un terminateur. Des exemples de promoteurs utilisables selon l'invention comprennent, mais ne sont pas limités aux promoteurs T7, araBAD, pLac, PDX2, AOX (alcohol oxidase). Par ailleurs, il peut en outre comprendre un ou plusieurs gène(s) de sélection permettant de sélectionner ou d'identifier les cellules transformées ou transfectées par 30 ledit vecteur (complémentation d'une mutation d'auxotrophie, gène codant pour la résistance à un antibiotique...). Il peut aussi comprendre des éléments supplémentaires 13 améliorant son maintien et/ou sa stabilité dans une cellule donnée (séquence cer qui favorise le maintien monomérique d'un plasmide, séquences d'intégration dans le génome cellulaire). Le vecteur de l'invention peut éventuellement être associé à une ou plusieurs substances améliorant l'efficacité de transformation ou de transfection et/ou la stabilité du vecteur. Ces substances sont largement documentées dans la littérature accessible à l'homme de l'art. A titre illustratif mais non limitatif, il peut s'agir de polymères, de lipides notamment cationiques, de liposomes, de protéines nucléaires ou encore de lipides neutres. Ces substances peuvent être utilisées seules ou en combinaison. Une combinaison envisageable est un vecteur recombinant plasmidique associé à des lipides cationiques (DOGS, DC-CHOL, spermine-chol, spermidine-chol etc.) et des lipides neutres (DOPE). Le polynucléotide, préférentiellement la molécule d'ADN, dans le vecteur d'expression est liée de manière opérationnelle à un promoteur pour diriger la synthèse d'ARN. A titre d'exemple, les promoteurs peuvent être des promoteurs eucaryotes ou procaryotes tels que CMV immediate early, HSV thymidine kinase, early and late SV40, LTRs de retrovirus et métallothionéine-I de souris. Le vecteur d'expression comporte également un site de fixation de ribosome pour l'initiation de la traduction et un vecteur de transcription. Le vecteur devrait également comporter des séquences d'amplification de 1 ' expression. On entend par « liée de manière opérationnelle à un promoteur» le lien par lequel un promoteur est situé de manière contigüe au polynucléotide selon l'invention pour contrôler l'expression de ladite séquence. Le terme « promoteur » est bien connu de l'homme de l'art et se réfère à une 25 région de l'ADN située à proximité d'un gène sur laquelle se fixe l'ARN polymérase, afin de démarrer la transcription. Un autre objet de l'invention concerne également une cellule hôte transformée comprenant un polynucléotide ou un vecteur selon l'invention. Aux fins de la présente invention, une telle cellule est constituée par toute cellule 30 qui peut être transformée ou transfectée par un polynucléotide ou un vecteur de 14 l'invention tels que décrits ci-avant. La cellule est appelée « cellule hôte » et peut être une cellule procaryote ou une cellule eucaryote. De manière préférée, la cellule hôte transformée selon l'invention est une cellule procaryote choisie dans le groupe consistant en les eubactéries, les archaebactéries et les cyanobactéries. Les systèmes d'expression bactériens peuvent être utilisés dans le cadre de la présente invention. Des exemples de cellules hôtes bactériennes comprennent notamment des bactéries des genres Escherichia (par exemple Escherichia coli), Pseudomonas (par exemple Pseudomonas fluorescens ou Pseudomonas stutzerei), Proteus (par exemple Proteus mirabilis), Ralstonia (par exemple Ralstonia eutropha), Streptomyces, Staphylococcus (par exemple Streptomyces carnosus), Lactococcus (par exemple Lactoccocus lactis), Bacillus (par exemple Bacillus subtilis, Bacillus megaterium ou Bacillus licheniformis), Lactobacillus ou Leuconostoc etc. De manière encore préférée, la cellule hôte transformée selon l'invention est une cellule eucaryote choisie dans le groupe consistant en les cellules animales, fongiques, de levure et de plantes. Les cellules de levures sont des cellules hôtes pouvant convenir dans le cadre de l'invention. Des exemples de cellules hôtes de levure pouvant utilisées comprennent, 20 mais ne sont pas limités à, Saccharomyces cerevisiae, Schizosaccharomyces pombe, Klyveromyces lactis, Yarrowia lipolytica, Hansenula polymorpha ou Pichia pastoris. Les systèmes d'expression fongiques sont aussi envisageables dans le cadre de la présente invention, tels que Aspergillus piger, Chrysosporium lucknowense, Aspergillus (par exemple Aspergillus oryzae, Aspergillus piger, Aspergillus nidulans, etc.), 25 Podospora anserina ou Trichoderma reesei. D'autres systèmes d'expression tels que les systèmes d'expression mammifères peuvent encore être utilisés dans le cadre de l'invention, par exemple les lignées cellulaires NSO, CHO, BHK, les systèmes transgéniques d'origine mammifère, mais aussi les cellules d'insectes ou les systèmes d'expression viraux tels que les 30 bactériophages M13, T7 ou X. ou encore les systèmes d'expression Baculovirus. 15 Préférentiellement, la cellule hôte selon la présente invention est une cellule procaryote. Les termes « cellule hôte transformée », « transformé » et « transformation » au sens de la présente invention font référence à l'introduction d'ADN dans une cellule. L'introduction d'un polynucléotide ou d'un vecteur tel que décrit dans la présente invention dans la cellule hôte peut être effectuée par des méthodes bien connues de l'homme du métier telles l'électroporation, le choc thermique sur cellules compétentes, la recombinaison la conjugaison, la transfection par PEI, par le phosphate de calcium, la transfection par DEAE-Dextran ou encore l'électroporation. Selon un autre objet, l'invention concerne une composition comprenant au moins un polypeptide, un polynucléotide, un vecteur ou une cellule hôte tels que décrits précédemment. Un autre objet de l'invention concerne un procédé de production d'un polypeptide tel que décrit précédemment, ledit procédé comprend les étapes de : a) insertion d'un polynucléotide ou d'un vecteur tel que décrit précédemment dans une cellule hôte; b) la mise en culture de ladite cellule obtenue à l'étape a) ; et c) l'extraction du polypeptide selon l'invention à partir de la culture obtenue à l'étape b). L'étape (a) d'introduction d'un polynucléotide ou d'un vecteur tel que décrit précédemment dans la cellule hôte est réalisée par des techniques de transformation bien connues de l'homme du métier, telles que la transfection, la lipofection, la transformation par l'acétate de lithium, la transformation par biolistique, la transformation par PEI, la fusion de protoplastes, la transformation par liposome, la transformation par Agrobacterium tumefaciens, ou encore les infections virales ou adénovirales. L'extraction du polypeptide de l'invention est faite à partir de la culture de l'étape (b) et réalisée par des techniques bien connues de l'homme du métier. Si l'organisme hôte produit ce polypeptide de manière extracellulaire, le surnageant de culture est 30 récupéré par centrifugation et peut directement être utilisé pour la mise en oeuvre des 16 synthèses de produits. Si l'expression est intracellulaire, les cellules sont centrifugées, concentrées puis lysées au moyen de lysozymes et de détergents ou broyées aux ultrasons ou traitées par cassage mécanique à l'aide de billes de verre ou presse de FRENCH. Au besoin, l'extraction peut consister en une purification du polypeptide peut être conduite par chromatographie d'affinité pour des métaux chélants tels que nickel ou cobalt et utilisation d'un tag (étiquette) de type « Histidine » (6 histidines successives) fusionné à la séquence du polypeptide tel que décrit précédemment. Un autre objet de l'invention concerne un procédé de production 10 d'accepteurs branchés d'unités glucosyle en alpha-1,3 comprenant un taux de branchements de telles unités glucosyle en alpha-1,3 compris entre 1 et 50 %, ledit procédé comprenant les étapes de: i) mélange dans un milieu réactionnel d'un polypeptide selon l'invention, d'un substrat dudit polypeptide et d'un accepteur ; et 15 ii) incubation dudit mélange obtenu à l'étape i) de sorte d'obtenir le branchement d'unités glucosyle en alpha -1,3 sur ledit accepteur. On entend par « accepteur branché d'unités glucosyle en alpha-1,3 » selon l'invention un accepteur tel que défini précédemment sur lequel sont fixées par l'action d'un polypeptide selon l'invention des unités glucosyle issues de l'hydrolyse du 20 substrat. Selon un mode de réalisation préféré, un accepteur branché d'unités glucosyle en alpha-1,3 selon l'invention est sélectionné parmi le groupe comprenant les polysaccharides, de préférence les glucanes, notamment les a-glucanes comme les a-1,6 glucanes (e.g. dextrane). 25 Selon un mode de réalisation préféré et tel que décrit ci-dessus, le substrat du polypeptide selon l'invention est choisi dans le groupe comprenant l'a-D- glucopyranosyl fluoride, le p-nitrophenyl a-D-glucopyranoside, le a-D-glucopyranosyl a-L-sorofuranoside, le lactulosucrose et le saccharose, de préférence le saccharose. 17 Selon un mode de réalisation préféré, le procédé selon l'invention permet de contrôler le taux de branchement alpha-1,3 de l'accepteur en faisant varier directement le rapport entre la concentration en substrat et celle en accepteur. Selon un mode de réalisation préféré de l'invention, ledit procédé est caractérisé en ce qu'il est destiné à l'obtention d'un accepteur branché d'unités glucosyle en alpha- 1,3 à un taux compris entre 1% et 50 %, de préférence entre 5 et 40% et de manière plus préférée encore entre 10 et 40%. Cette variation est possible en fonction du rapport entre la concentration du substrat sur celle des groupements hydroxyles libre de la molécule acceptrice. Avantageusement, un rapport supérieur ou égal à 1 permet d'obtenir un taux de branchement compris entre 35 et 50%, de préférence entre 35 et 40% Avantageusement encore, un rapport compris entre 0,5 et 1 permet d'obtenir un taux de branchement compris entre 20 et 35%. Avantageusement toujours, un rapport inférieur à 0,5 permet d'obtenir un taux 15 de branchement inférieur à 20%. Selon l'invention, le taux de branchements en alpha-1,3 obtenus dans le cadre du présent procédé est considéré par rapport à la totalité des sites disponibles sur ledit accepteur. Selon un mode de réalisation particulier, ledit procédé selon l'invention 20 comprend en outre une étape c) de purification des accepteurs branchés d'unités glucosyle en alpha-1,3. Toujours selon un mode de réalisation particulier, ledit procédé selon l'invention comprend une étape d) de caractérisation des accepteurs branchés d'unités glucosyle en alpha-1,3 selon l'invention. Une telle étape de caractérisation peut être réalisée par 25 diverses méthodes bien connues de l'Homme de l'art. A titre d'exemple, seront utilisées la technique de chromatographie liquide sous haute pression (HPLC), la spectrométrie de masse, la spectrométrie par résonance magnétique nucléaire (RMN) les techniques chimiques comme la méthylation et l'acétolyse ou encore l'ELISA avec des anticorps monoclonaux spécifiques des liaisons 30 alpha-1,3. 18 Un autre objet selon l'invention concerne un accepteur branché d'unités glucosyle en alpha-1,3 susceptible d'être obtenu par le procédé tel que décrit précédemment. Ledit accepteur peut ne pas être un dextrane. Avantageusement encore, le taux de branchement dudit accepteur est inférieur à 50%, de préférence inférieur à 40%. La présente demande de brevet vise également à couvrir les diverses utilisations possibles d'un polypeptide, d'un polynucléotide, d'un vecteur, d'une cellule hôte et/ou d'une composition de l'invention tels que décrits précédemment. Ainsi, un autre objet de l'invention concerne l'utilisation d'un polypeptide, d'un polynucléotide, d'un vecteur, d'une cellule hôte et/ou d'une composition selon l'invention pour la production d'accepteurs branchés d'unités glucosyle en alpha-1,3. De manière préférée, lesdits accepteurs sont branchés d'unité glucosyle en alpha- 1,3 à un taux compris entre 1 et 50%, de préférence entre 5 et 40%, et de manière préférée encore entre 10 et 40%. La présente demande de brevet vise également à couvrir les diverses utilisations possibles d'un accepteur branché d'unités glucosyle en alpha-1,3 selon l'invention. L'invention porte donc sur l'utilisation d'un accepteur branché d'unités glucosyle en alpha-1,3 produits à partir d'un polypeptide selon l'invention en tant qu'agent de charge, épaississant, émulsifiant, texturant et/ou stabilisant dans la préparation de formulations industrielles alimentaires, cosmétiques, agrochimiques, pétrochimiques et pharmaceutiques. Ces utilisations consistent en l'utilisation desdits accepteurs branchés d'unités glucosyle en alpha-1,3 en tant que biopolymères. Des exemples de formulations industrielles selon l'invention incluent de manière non limitative les bioplastiques mais aussi les formulations agroalimentaires, par exemple des produits de boulangerie, ainsi que des formulations dans le secteur pharmaceutique. 19 D'autres exemples de formulations industrielles incluent également des formulations destinées aux industries du bâtiment, de la peinture, du papier, du textile, des phytosanitaires, du traitement des eaux, industrie pétrolière. L'invention porte également sur l'utilisation non thérapeutique d'un 5 accepteur branché d'unités glucosyle en alpha-1,3 en tant qu'agent prébiotique. Les accepteurs branchés d'unités glucosyle en alpha-1,3 produits selon l'invention présente les avantages d'avoir une meilleure résistance à la barrière digestive, une meilleure stabilité, des coûts de production potentiellement moins chers, et une plus grande facilité à être incorporés aux préparations alimentaires. 10 Les prébiotiques sont des ingrédients alimentaires non digestibles qui arrivent intacts dans le colon où ils sont alors spécifiquement métabolisés par une certaine catégorie du microbiote intestinal (humain ou animal) dite « bénéfique ». A titre d'exemples non limitatifs d'effets prébiotiques, on peut citer l'amélioration du transit intestinal chez les animaux et chez l'homme, l'amélioration de 15 l'assimilation des minéraux tels que le calcium, le magnésium, le zinc ou encore le fer, la réduction de l'inflammation intestinale ou encore la réduction de la croissance de pathogènes. EXEMPLES Exemple 1 : Criblage de nouvelles enzymes chez L. citreum NRRL B-742 20 Après séquençage du génome de la souche L. citreum NRRL B-742, un gène s'est avéré particulièrement original En effet, la protéine putative correspondante s'est avérée posséder une séquence présentant un maximum d'identité de seulement 54% avec la Glycoside-Hydrolase putative de Leuconostoc fallax KCTC 3537 dont la séquence est disponible dans les bases de données, et référencée par le NCBI sous le numéro 25 ZP 08312597. Maintenant, aucune autre séquence protéique présentant une identité significative n'a pu être identifiée. Ce gène code pour une transglucosylase putative de 1888 acides aminés, possédant la triade catalytique caractéristique DED et les 4 zones conservées décrites habituellement chez les transglucosylases de la famille 70. La représentation schématique de la 20 protéine est montrée à la figure 1 (basée sur l'alignement de séquences protéiques avec la GTF180) avec 5 domaines : i) domaine V (403-446 et 1356-1800), ii) domaine IV (446-586 et 1284-1356), iii) domaine A (catalytique) (636-899, 1052-1191 et 12311270), iv) domaine B (586-636, 1191-1231 et 1270-1284) et y) domaine C (899-1052). Les acides aminés catalytiques (DED) sont indiqués à l'aide d'une étoile dans la structure primaire et sont représenté en gras et rouge dans les différents motifs II, III et IV. Maintenant, des motifs protéiques particulièrement originaux ont pu être identifiés en amont et en aval des acides aminés de la triade catalytique, dans des zones habituellement fortement conservées (cf. tableau 1). Du fait de l'originalité de cette transglucosylase putative, il a été décidé d'en initier le clonage en vue de débuter sa caractérisation biochimique. 21 GenBank Motif II Motif III Motif IV Motif 1 Spécificité AAC63063.1 Gtfl [5c1] 449 SIRVDAVDNVD 486 11\/SIVEAWSDN 559 FARAHDSEVQDLIRD 931 ADWVPDQ a-1,3 AAA88588.1 GtfB [Sm] 1011 SIRVDAVDNVD 1048 HLSILEAWSDN 1120 FIRAHDSEVQDLIAD 1488 ADWVPDQ BAA26114.1 GtfSI [Sm] 473 SIRVDAVDNVD 510 HLSILEAWSDN 583 FIRAHDSEVQDLIRD 954 ADWVPDQ AAU08015.1 GtfA [Lr] 1020 SVRVDAPDNID 1056 HINILEDWNHA 1128 FVRAHDNNSQDQIQN 1508 ADWVPDQ a-1,4 / a-1,6 AAY86923.1 GtfO [Lr] 1020 SVRVDAPDNID 1056 HINILEDWNSS 1128 FIRAHDNNSQDQIQN 1508 ADWVPDQ CAB65910.2 Asr [Lm] 631 GIRVDAVDNVD 668 HLSILEDWNGK 762 FVRAHDYDAQDPIRK 1168 ADWVPDQ a-1,6 / a-1,3 ABQ83597.1 GtfW [Lrj 748 GFRVDAADNID 785 HLVYNEGYHSG 568 FVTNHDQR-KNVINQ 1216 EDLVMNQ a-4,6 AAU08003.2 GtfML4 [Lrj 1012 GFRVDAADNID 1049 HLSYNEGYHSG 1121 FVTNHDQR-KNLINR 1479 EDIVMNQ AAB40875.1 DsrA [Lc] 282 GYRVDAVDNVD 319 IYQFWKTGEMK 392 FIRAHDSEVQTIIAD 764 NDVA/PDQ a-1,6 ABF85832.1 DsrCB4 [Lc] 526 GIRVDAVDNVD 563 HLSILEDWSHN 636 FVRAHDSEVQTVIAQ 1001 ADWVPDQ CAB76565.1 DsrC [Lm] 498 GIRVDAVDNVD 535 HLSILEDWSHN 608 FVRAHDSEVQTVIAQ 973 ADWVPDQ AAD10952.1 DsrS [Lm] 547 GIRVDAVDNVD 584 HLSILEDWSHN 657 FVRAHDSEVQTVIAQ 1023 ADWVPDQ AAU08001.1 GTF180 [Lr] 1021 GIRVDAVDNVD 1058 HINILEDWGWD 1131 FVRAHDSNAQDQIRQ 1503 ADWVPDQ CAD22883.1 GBD-CD2[Lc] 2206 SIRIDAVDFIH 2243 HISLVEAGLDA 2317 IIHAHDKGVQEKVGA 2688 ADVVDNQ a-1,2 a-1,3 BrS [lx] 667 SMRIDAISFVD 704 HISIVEAPKGE 783 IVHAHDKDIQDTVIH 1182 ADFVANQ Tableau I : Alignement de séquences des zones conservées du coeur catalytique de la nouvelle transglucosylase (nommée a-1,3BrS dans le tableau) avec des enzymes caractérisées et de spécificité de liaisons connue 22 w O O O w 00 Exemple 2 : Production d'une nouvelle enzyme chez E. coli Le gène codant pour cette enzyme a été cloné dans plusieurs vecteurs (pET 53, 55, 49 et 60) commercialisés par NOVAGEN ou INVITROGEN, et exprimé dans différentes souches d'E. cou (TOP10, BL21AI, BL21 Star DE3, Arctic Express DE3). Ce clonage a permis une production conséquente de la protéine. Cette production a donc permis d'initier les expériences de caractérisation biochimique en vue de préciser les propriétés catalytiques de l'enzyme identifiée. Exemple 3 : Réactions d'un polypeptide selon l'invention avec du saccharose, un accepteur de type dextrane et l'enzyme objet de l'invention et analyse des produits de cette réaction Pour la caractérisation des propriétés fonctionnelles de cette transglucosylase putative, l'enzyme a d'abord été mise en oeuvre sur saccharose seul, substrat naturel des enzymes de la famille GH70. De façon inattendue, les analyses chromatographiques (HPAEC-PAD, HPSEC) ont 15 montré que l'enzyme seule n'est capable que d'hydrolyser ce substrat en quantité équimolaires de glucose + fructose. Maintenant, et à partir de saccharose seul, cette enzyme n'a montré aucune capacité à produire des polymères d'unités glucosyle. Il est intéressant de noter qu'à ce jour, les analyses bioinformatiques sur la structure primaire des GH de la famille 70 n'auraient pas permis de prédire cette particularité (les 20 déterminants structuraux régissant la capacité-ou non- d'une transglucosylase à polymériser ne sont pas encore connus). Alors que rien ne présageait que cette protéine présentait malgré tout une activité, cette dernière a aussi été incubée en présence de saccharose et d'un dextrane linéaire (glucane composé exclusivement de liaisons a-1,6) d'un poids moléculaire de 1500 Da. 25 Ont été incubés pendant 16h à 30°C, de l'enzyme dans du saccharose (de 25g/L à 170g/L) en présence de dextranes de masse molaire variable (de 1500 Da à 2.106Da) et de concentration variant de 30g/L à 100g/L. ; le rapport Saccharose/Accepteur (M/M) variant selon le taux de branchement en a-1,3 souhaité. Le milieu réactionnel a été tamponné avec une solution d'acétate de sodium à 50mM final, pH 5.2. Un prélèvement 30 au temps initial et final de la réaction a été effectué, chauffé à 95°C pendant 5 minutes 23 afin de stopper la réaction puis analysé par différentes techniques chromatographies (HPAEC-PAD, HPSEC) et structurales (RMN du proton). Plus spécifiquement, les monosaccharides, disaccharides et petits oligosaccharides (degré de polymérisation inférieur à 20) ont été séparés et quantifiés par HPAEC-PAD 5 (High Performance Anion Exchange Chromatography with Pulsed Amperometric Detection), sur colonne Dionex CarboPac PA-100. Un gradient d'acétate de sodium de 6 à 300 mM en 36 min, contenant 150 mM de soude permet de séparer glucose, fructose, saccharose, leucrose, isomaltooligosaccharides, etc. Des gammes étalons de 5, 10, 15 et 20 mg.kg-1 de ces sucres ont été réalisées pour permettre leur quantification. 10 Ces échantillons ont été dilués pour être à une concentration en sucres totaux de 25 mg.kg-1. Des analyses par HPSEC (High-Performance Size Exclusion Chromatography) ont permis d'estimer la masse moléculaire des populations d'oligosaccharides ou des polymères synthétisés au cours des réactions. La séparation s'est faite à l'aide de deux 15 colonnes SHODEX (OH-Pack SB-805 et 802.5) placées en série. Des solutions de 1, 2,5, 5, et 10 g.L-1 de saccharose, fructose, maltoheptaose, Dextrane 11,3 kDa, 68,4 kDa, 503 kDa, 2000 kDa ont servis d'étalons. Les échantillons ont été dilués au 10e pour être à une concentration maximale de 10 g.kg-1. Une solution de 0,45 M NaNO3 + 1% (v/v) d'éthylène glycol à 0,3 mL.min-1 sert d' éluant, et les échantillons doivent être 20 dilués dans la phase mobile. Colonnes et précolonnes sont maintenues à 70°C, la détection se fait par réfractométrie. Pour les analyses RMN, les polymères synthétisés ont été conservés à -80°C pendant la nuit pour être ensuite lyophilisé (appareil CHRIST ALPHA 2-4). 10 mg de la poudre obtenue sont ensuite dissous dans 0.5mL d'eau deutérée et analysée par RMN proton. 25 Les spectres RMN 1H ont été réalisés sur un spectromètre BRUKER AVANCE (500 MHz). Les données ont ensuite été traitées avec le logiciel TOPSPIN 3.0. La figure 2 montre les Profils HPAEC-PAD d'une réaction utilisant comme accepteur du dextrane 1500Da. La figure 3 montre le profil RMN du dextrane 1500Da obtenu en fin d'incubation. 24 La figure 4 montre les profils HPAEC-PAD d'une digestion à l'endodextranase des produits de la réaction d'accepteur Saccharose + dextrane 1500 Da (to= dextrane 1500Da branché en a-1,3). Alors qu'aucune polymérisation n'était observée en présence de saccharose seul, les résultats ont révélé une modification des caractéristiques du dextrane. Une analyse plus fine des résultats de chromatographie et d'analyses structurales par RMN du proton mettent en évidence la synthèse de branchements en a-1,3 sur la molécule acceptrice (figures 2 et 3). Notamment, le produit de la réaction résiste à l'action d'une endodextranase, enzyme spécifique de l'hydrolyse des liaisons a-1,6 (Figure 4). Plus globalement, ces résultats laissent présumer d'une résistance à l'action des enzymes digestives, et donc de l'existence de propriétés prébiotiques comparables à celles des isomaltooligosaccharides ou des gluco-oligosaccharides branchés en a-1,2 (GOFFIN et al., Crit. Rev. Food Sci. Nutr., vol.51(5), p:394-409, 2011 ; SARBINI et aL, Appl. Environ. Microbiol., vol.77(15), p:5307-15, 2011). L'enzyme s'est par ailleurs montrée particulièrement efficace pour catalyser le transfert de résidus glucosyle sur des isomaltooligosaccharides puisque l'ajout de dextrane 1500Da en tant que molécule acceptrice dans le milieu réactionnel a pour effet de multiplier l'activité de l'enzyme d'un facteur 26 (par rapport à l'activité mesurée sur saccharose seul). Finalement, ces résultats mettent en évidence que la protéine identifiée est responsable des branchements en a-1,3 du glucane correspondant à la fraction S et qu'une enzyme seule comme on le croyait jusqu'alors n'est pas à la base de la synthèse de ce glucane spécifique. Du fait de cette activité, le gène correspondant, codant pour une «enzyme responsable de glucosylations spécifiques par branchement en a-1,3» a été baptisé a-1,3BrS. Exemple 4 : Influence de la variation de concentration de substrat/accepteur sur le nombre de branchements obtenus en alpha-1,3 Des expériences complémentaires ont montré en outre qu'en jouant sur la concentration en saccharose par rapport à la concentration en dextrane 1500 Da (rapport 30 donneur/accepteur), il est possible de contrôler le taux de branchement en a-1,3 de ce petit dextrane. 25 La figure 5 montre le contrôle du taux de liaisons a-1,3 en fonction du rapport saccharose/dextrane 1500Da (utilisation de concentrations massiques). Les résultats montrent qu'à un rapport saccharose sur dextrane 1500 (équivalent à un rapport substrat sur groupement hydroxyle) supérieur ou égal à 1, on arrive à un taux de substitution de l'ordre de 40% et qui tend vers 50% en augmentant la concentration de substrat. Maintenant, en modulant ce rapport, on arrive à diminuer le taux de substitution. Ainsi pour un rapport de 1/2, le taux de substitution est légèrement inférieur à 25%, et pour un rapport de 1/3, le taux de substitution s'élève est légèrement inférieur à 15%. Exemple 5 : Accepteurs Dextrane De plus, l'enzyme s'est montrée capable de faire ces réactions de branchements en a-1,3 sur une large gamme de dextranes de masse molaire supérieure. Des essais ont été notamment réalisés sur du dextrane 68.4 kDa et 503 kDa. D'après des analyses de RMN du proton, les dextranes de haut poids moléculaire présentent 50% de liaisons a-1,3 (figure 6). On retrouve ici très certainement la structure en peigne décrite dans les années 80 lors des travaux sur le glucane natif produit par la souche. La figure 6 montre le spectre RMN du dextrane 68.4kDa branché en a-1,3 Ces résultats montrent que la a-1,3BrS est donc capable de reconnaitre et de brancher de nombreux dextranes dont la masse molaire varie de 1,5 à 503 kDa. Nous pouvons donc proposer un panel de produits allant des petits gluco-oligosaccharides prébiotiques aux polymères de haute masse molaire, avec des taux contrôlés -à façon- de branchements en a-1,3. Exemples 6 :Développement d'un procédé en 1 seule étape pour la production d'oligosaccharides avec des branchements contrôlés en a -1,3. Ce procédé consiste en la mise en oeuvre d'une polymérase de la famille GH-70 couplée à l'action de l'enzyme a -1,3 BrS sur saccharose seul. Dans sa mise en oeuvre, le procédé est testé avec une proportion relative variable des deux enzymes. Les produits formés issus de la réaction enzymatique sont analysés par 30 chromatographies (HPAEC-PAD, HPSEC afin de déterminer la taille des 26 oligosaccharides produits) et par RMN du proton (détermination de la proportion de liaisons a -1,3). Exemple 7: Evaluation des propriétés physico-chimiques des glucanes de très haute masse molaire à teneur en liaisons a -1,3 contrôlée. Différents glucanes de très haute masse molaire sont incubés en présence de l'enzyme a-1,3 BrS. Les propriétés physico-chimiques des glucanes obtenus sont investiguées, notamment par analyse thermogravimétrique, par détermination de la température de transition vitreuse, et par analyse rhéologique (cf. IRAGUE et al, Biomacromolecules, 2012). Exemple 8: Evaluation des propriétés physico-chimiques des glucanes de très haute masse molaire à teneur contrôlée en liaisons a -1,2 et a -1,3. Différents glucanes de très haute masse molaire sont incubés en présence de l'enzyme a-1,3 BrS et de l'enzyme GBD-CD2 (BRISON et al., 2009) qui montre une activité de branchement en a-1,2. Les propriétés physico-chimiques des glucanes obtenus sont investiguées, notamment par analyse thermogravimétrique, par détermination de la température de transition vitreuse, et par analyse rhéologique (cf. IRAGUE et al, Biomacromolecules, 2012). Exemple 9 : Evaluation des propriétés physico-chimiques et prébiotiques d'oligosaccharides à teneur contrôlée en liaisons a -1,2 et a -1,3. Des isomaltooligosaccharides sont incubés en présence de l'enzyme a-1,3 BrS et de l'enzyme GBD-CD2 qui montre une activité de branchement en a-1,2. Les propriétés prébiotiques et physico-chimiques des glucanes obtenus sont investiguées. Exemple 10 : Evaluation des propriétés prébiotiques, nutritionnelles et des effets métaboliques des oligosaccharides branchés en a -1,3 Ces propriétés sont testées pour différents oligosaccharides branchés avec l'enzyme a- 1,3 BrS. Exemple 11 : Criblage d'une librairie d'accepteur L'enzyme a-1,3 BrS est mise en présence de son substrat naturel (le saccharose) et d'un panel de différents accepteurs, dont des dextranes branchés en a -1,2 (BRISON et al., 27 09), des mutanes, des alternanes, des reuteranes, des fructanes et fructooligosaccharides, des polyphénols, des flavonoïdes, des acides aminés. Les produits de la réaction sont analysés par différentes techniques de chromatographie (spectrométrie de masse, HPAEC-PAD) et par RMN. Exemple 12 : Criblage d'une librairie de donneur L'enzyme a-1,3 BrS est mise en oeuvre sur différents analogues du saccharose (DAUDE et al, 2012) pouvant jouer le rôle de donneur d'unités glucosyle. 28 REVENDICATIONS1. Un polypeptide isolé ayant la capacité de former des branchements d'unités glucosyle en alpha-1,3 sur un accepteur comprenant au moins un groupement hydroxyle et caractérisé en ce que ledit polypeptide comprend : i) le motif I de séquence SEQ id n°1 (ADFVANQ), ii) le motif II de séquence SEQ id n°2 (SMRIDAISFVD), iii) le motif III de séquence SEQ id n°3 (HISIVEAPKGE), et iv) le motif IV de séquence SEQ id n°4 (IVHAHDKDIQDTVIH), ou des dérivés d'un ou plusieurs desdits domaines ; lequel polypeptide présente le résidu aspartique (D) en position 5 du motif II (SEQ id n°2), le résidu glutamique (E) en position 6 du motif III (SEQ id n°3) et le résidu aspartique (D) en position 6 du motif IV (SEQ id n°4). Le polypeptide isolé selon la revendication 1, caractérisé en ce que ledit polypeptide comprend la séquence SEQ id n°5 un orthologue, un dérivé, ou un fragment de celle-ci, de préférence un polypeptide comprenant la séquence SEQ id n°6, un orthologue, un dérivé, ou un fragment de celle-ci. Le polypeptide isolé selon l'une quelconque des revendications 1 ou 2, caractérisé en ce que ledit polypeptide comprend la séquence SEQ id n°7, un orthologue, un dérivé, ou un fragment de celle-ci, de préférence un polypeptide comprenant la séquence SEQ id n°8, un orthologue, un dérivé, ou un fragment de celle-ci. Le polypeptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisé en ce que ledit polypeptide comprend ou consiste en la séquence SEQ id n°9, un orthologue, un dérivé, ou un fragment de celle-ci. Un polynucléotide isolé codant pour un polypeptide selon l'une quelconque des 30 revendications 1 à 4, de préférence ledit polynucléotide est définie par la séquence SEQ id n°10.2. 3. 4. 5. 29. Un vecteur d'expression comprenant un polynucléotide tel que défini à la revendication 5. 7. Une cellule hôte transformée comprenant un polynucléotide tel que défini à la revendication 5 ou un vecteur d'expression tel que défini à la revendication 6. 8. Une composition comprenant au moins un polypeptide tel que défini à l'une quelconque des revendications 1 à 4, un polynucléotide tel que défini à la revendication 5, un vecteur tel que défini à la revendication 6 ou une cellule hôte transformée tel que défini à la revendication 7. 9. Un procédé de production d'un polypeptide tel que défini à l'une quelconque des revendications 1 à 4, ledit procédé comprenant les étapes de : a) insertion d'un polynucléotide tel que défini à la revendication 5 ou d'un vecteur tel que défini à la revendication 6 dans une cellule hôte; b) la mise en culture de ladite cellule obtenue à l'étape a) ; et c) l'extraction du polypeptide à partir de la culture obtenue à l'étape b). 20 10. Un procédé de production d'accepteurs branchés d'unités glucosyle en alpha-1,3 comprenant un taux de branchement de telles unités glucosyle en alpha-1,3 compris entre 1 et 50 %, ledit procédé comprenant les étapes de : i) mélange dans un milieu réactionnel d'un polypeptide tel que défini à 25 l'une quelconque des revendications 1 à 4, d'un substrat dudit polypeptide et d'un accepteur ; et ii) incubation dudit mélange obtenu à l'étape i) de sorte d'obtenir le branchement d'unités glucosyle en alpha -1,3 sur ledit accepteur. 30 11. Le procédé selon la revendication 10, caractérisé en ce que ledit accepteur branché d'unités glucosyle en alpha-1,3 est sélectionné parmi le groupe comprenant les polysaccharides, de préférence les glucanes, notamment les aglucanes comme le dextrane, les dextranes ramifiés en a-1,2, les alternanes, les 30mutanes, les reuteranes, l'amidon, l'amylopectine, l'amylose, le glycogène et le pullulane. 12. Le procédé selon l'une quelconque des revendications 10 ou 11 ; caractérisé en ce que le substrat est choisi dans le groupe comprenant l'a-D-glucopyranosyl fluoride, le p-nitrophenyl a-D-glucopyranoside, le a-D-glucopyranosyl a-Lsorofuranoside le lactulosucrose et le saccharose. 13. Un accepteur branché d'unités glucosyle en alpha-1,3 susceptible d'être obtenu par le procédé selon l'une quelconque des revendications 10 à 12. 14. Une utilisation d'un polypeptide tel que défini à l'une quelconque des revendications 1 à 4, d'un polynucléotide tel que défini à la revendication 5, d'un vecteur tel que défini à la revendication 6, d'une cellule hôte tel que définie à la revendication 7 et/ou d'une composition tel que définie à la revendication 8 pour la production d'accepteurs branchés d'unités glucosyle en alpha-1,3, de préférence lesdits accepteurs sont branchés d'unité glucosyle en alpha-1,3 à un taux compris entre 1 et 50%, de préférence entre 5 et 40% et de manière encore plus préférée entre 10 et 40%. 15. Une utilisation d'un accepteur branché d'unités glucosyle en alpha-1,3 tel que défini à la revendication 13 en tant qu'agent épaississant, émulsifiant et/ou stabilisant dans la préparation de formulations industrielles alimentaires, cosmétiques, agrochimique, pétrochimiques et pharmaceutiques. 16. Une utilisation non thérapeutique d'un accepteur branché d'unités glucosyle en alpha-1,3 tel que défini à la revendication 13 en tant qu'agent effet prébiotique. 31