Brevet FR2989086A1 — publié le 20131011

COMPOSES THIOL ET LEUR UTILISATION POUR LA SYNTHESE D'OLIGONUCLEOTIDES MODIFIES DOMAINE TECHNIQUE La présente invention concerne un composé thiol apte à former une chaîne d'oligomères pouvant être greffée sur un oligonucléotide. L'invention concerne également un oligonucléotide greffé par un tel composé, possédant ainsi une ou plusieurs fonctions thiol, apte à être immobilisé sur une surface d'or ou sur une surface greffée, notamment une surface greffée par des groupements maléimide ou acrylamide. L'invention concerne également un kit de test de détection d'interaction entre des nucléotides et d'autres molécules utilisant comme surface la surface d'or ou la surface greffée, notamment par des groupements maléimide ou acrylamide sur laquelle sont immobilisés les oligonucléotides selon l'invention. ETAT DE LA TECHNIQUE Les oligonucléotides sont des molécules comprenant une courte chaîne de nucléotides, le nombre de nucléotides pouvant varier de 1 à environ 100. Ce sont des fragments d'ARN (acide ribonucléique) ou d'ADN (acide désoxyribonucléique). Les oligonucléotides sont synthétisés généralement sous forme de simples brins. Les oligonucléotides peuvent être synthétisés par voie enzymatique ou par des méthodes de synthèse chimique. Lorsque l'on choisit une méthode chimique, habituellement, les oligonucléotides sont synthétisés sur support solide par des procédés bien connus de l'homme du métier, par exemple en mettant en oeuvre un procédé utilisant des phosphoramidites, des H-phosphonates, des phosphodiesters ou des phosphotriesters, les deux derniers composés étant des dérivés de l'acide phosphorique, tandis que les phosphoramidites sont des dérivés de l'acide phosphoreux. Une propriété importante des oligonucléotides est leur capacité à contrôler les gènes et la fonction des protéines dans une séquence spécifique. Cette propriété fait des oligonucléotides et de leurs dérivés des composés très utilisés dans la recherche en biologie moléculaire et dans de nombreuses applications pharmaceutiques et de diagnostic. Le domaine de la recherche nécessite d'avoir à disposition de grandes quantités d'oligonucléotides. Ainsi, un procédé permettant de produire de grandes quantités d'oligonucléotides ayant une très haute pureté est nécessaire. Les acides nucléiques ayant une séquence donnée de nucléotides sont largement utilisés pour la détection d'ADN dans des échantillons biologiques. Le principe de ce test de détection repose sur la complémentarité de la séquence de nucléotides avec la séquence cible, formant ainsi un double brin. Ce double brin est formé au cours d'un procédé nommé hybridation. Ce phénomène d'hybridation peut ensuite être détecté par diverses méthodes, notamment en marquant la séquence de nucléotides destinée à se lier à la séquence initialement présente. Les méthodes de marquage, fluorescent ou radioactif, pour la détection du phénomène d'hybridation présentent certains inconvénients. Le marquage nécessite une étape supplémentaire lors de la synthèse de la séquence de nucléotides, cette étape étant parfois difficile à mettre en oeuvre. Le test basé sur ce phénomène d'hybridation détecté par marquage nécessite, après l'étape d'hybridation, d'éliminer les séquences de nucléotides marquées ne s'étant pas liées à la séquence cible de l'échantillon. D'autres méthodes de détection ont alors été mises en oeuvre, notamment des méthodes dans lesquelles les séquences de nucléotides sont préalablement immobilisées sur une surface, l'échantillon à tester étant ensuite mis en contact avec cette surface afin de créer le phénomène d'hybridation par la formation de doubles brins. Parmi ces autres méthodes, les méthodes électrochimiques sont de plus en plus utilisées. Ces méthodes sont basées sur l'immobilisation d'oligonucléotides sur une électrode, par exemple une électrode d'or. Au cours du test, l'hybridation des oligonucléotides simples brins immobilisés sur l'électrode d'or est quantifiée grâce à la mesure du courant électrique, qui dépend du nombre de doubles brins formés entre l'oligonucléotide simple brin immobilisé et l'oligonucléotide de l'échantillon. Afin de réaliser ces tests, l'oligonucléotide est immobilisé sur la surface métallique, et notamment sur une surface d'or. Cette immobilisation peut notamment être obtenue grâce à une liaison entre un atome d'or et un atome de soufre. Cependant, la liaison Au-S est modérément forte. Ainsi, une seule liaison or-soufre ne suffit pas à immobiliser un oligonucléotide sur la surface d'or de façon très stable. En effet, les procédés de test supposent des étapes, notamment de lavage, qui occasionnent de fortes contraintes mécaniques susceptibles de déstabiliser la liaison Au-S. Le document EP 0 523 978 divulgue des composés phosphoramidite ou phosphonate utilisables pour la production d'oligonucléotides modifiés par des thiols. Ils ne peuvent être introduits qu'une seule fois et uniquement sur l'extrémité 5' d'un oligonucléotide. Le document US 7,601,848 divulgue un composé polyfonctionnel comprenant deux atomes de soufre destiné à être incorporé dans des oligomères afin de créer au moins deux liaisons or-soufre et ainsi stabiliser l'oligonucléotide sur la surface d'or. Certains de ces composés comportent une fonction phosphoramidite. Les composés utilisés dans ce document sont fabriqués à partir de composés très coûteux et le couplage du composé polyfonctionnel sur les oligonucléotides n'a pas un rendement satisfaisant en raison de l'encombrement stérique de ce composé. Dans ce document, un agent de liaison est nécessaire afin de lier les composés thiol entre eux et ainsi effectuer une multiple introduction de composés thiol dans un oligonucléotide. Le but de la présente invention est de fournir un composé thiol palliant au moins partiellement les inconvénients précités. Plus particulièrement, l'invention vise à fournir une méthode permettant d'introduire facilement et efficacement une ou plusieurs fonctions thiol dans un oligonucléotide. RE SUME DE L'INVENTION Un premier objet de l'invention concerne un composé répondant à la formule (I) suivante : T Y \Alf D-0 (I) R dans laquelle : T est un groupement choisi parmi -0-P(OR1)N(R2)2, -0-PH(0)0-, -0C(0)JC(0)NH-E, o R1 est choisi parmi les groupements 2-cyanoéthyle, R'iR'2R'3SiCH2CH2, et R'1, R'2, R'3 identiques ou différents représentent un groupement choisi parmi les alkyles linéaires ou ramifiés comportant de 1 à 12 atomes de carbone et les aryles en C6-C12, o R2 est choisi parmi les groupements alkyles linéaires ou ramifiés comportant de 1 à 12 atomes de carbone, pyrrolidine, o J est choisi parmi une simple liaison, un groupement -CH2-, -CH2CH2-, -CH2OCH2-, -CH2OPhOCH2- où Ph est un benzyle, o E représente un support solide, D est un groupement protecteur des alcools, W est choisi parmi les groupements alcanes tri-yles en C1-C12, Z est choisi parmi les groupements alkoxy en C1-C12, cyclohétéroalkyles oxygéné ou azoté en C3-C12, NCO-alkyles en C1-C12, CON-alkyles en C1-C12, Y est choisi parmi les groupements alkyles linéaires ou ramifiés en C1-C12, aminoalkyles en C1-C12, alkoxy en C1-C12, cycloalkyles en C3-C12, cyclohétéroalkyles oxygénés ou azotés en C3-C12, X est choisi parmi les groupements alkyles linéaires ou ramifiés en C1-C12, 5 aminoalkyles en C1-C12, alkoxy en C1-C12, cycloalkyles en C3-C12, cyclohétéroalkyles oxygénés ou azotés en C3-C12, R est choisi parmi les groupements acyles en C1-C12, S-alkyles en C1-C12, S- aryles en C6-C12, S-2-pyridine, S-hétéroalkyles oxygénés ou azotés en C1-C12, Scycloalkyles en C3-C12, S-cyclohétéroalkyles oxygénés ou azotés en C3-C12. 10 Selon un mode de réalisation, le composé répond à l'une des formules (Ia), (Ib) et (Ic) ci-dessous : Y- 0-P(OR1)N(R2)2 X-W D-0/ \ (Ia) 15 R 20 (lb) s R O O 25 0 J N (Ic) I H Y X-W D-O \ / R 30 Selon un mode de réalisation, - D est choisi parmi le 4,4'-diméthoxytrityle, le 9-phenylxanthen-9-yl ou le Fluorenylmethyloxycarbonyl, - W est un groupement alcane tri-yle en C1-C6, de préférence un groupement 35 choisi parmi CH, CCH3, CCH2CH3, cyclohexyle et benzyle ; et/ou - Z est choisi parmi les groupements alkoxy en C1-C6, cyclohétéroalkyles oxygéné ou azoté en C3-C6, NCO-alkyles en C1-C6, CON-alkyles en Cl-C6 ; et/ou - Y est choisi parmi les groupements alkyles linéaires ou ramifiés en C1-C6, aminoalkyles en C1-C6, alkoxy en C1-C6, cycloalkyles en C3-C6, cyclohétéroalkyles oxygénés ou azotés en C3-C6 ; et/ou - X est choisi parmi les groupements alkyles linéaires ou ramifiés en C1-C6, aminoalkyles en Cl-C6, alkoxy en Cl-C6, cycloalkyles en C3-C6, cyclohétéroalkyles oxygénés ou azotés en C3-C6 ; et/ou - R est choisi parmi les groupements acyles en C1-C6, S-alkyles en C1-C6, S- aryles en C6-C6, S-hétéroalkyles oxygénés ou azotés en C1-C6, Scycloalkyles en C3-C6, S-cyclohétéroalkyles oxygénés ou azotés en C3-C6, de préférence R est un acyle en C1-C6. Selon un mode de réalisation, le groupement T est un groupement -0- 1 5 P(ORi)N(R2)2 où R2 est un groupement isopropyle et R1 est choisi parmi les groupements 2-cyanoéthyle, 2-(triméthylsily1)éthyle, 2-(triphénylsilyl)éthyle, 2- (diphénylméthylsily1)éthyle. Selon un mode de réalisation, le groupement T est le groupement - 0C(0)JC(0)NH-E où E est un support solide choisi parmi les résines, en particulier 20 parmi les résines à base de polystyrène, polyacrylamide, polyéthylèneglycol, cellulose, polyéthylène, polyester, latex, polyamide, polydiméthylacrylamide, les polymères hydrophiles synthétiques ou naturels, les billes de verre, les gels de silice. Un autre objet de l'invention concerne un procédé de fabrication d'un composé de formule (I) selon l'invention comprenant au moins une étape choisie parmi les 25 étapes suivantes : - préparation du composé (Ta) à partir du composé (II) selon le schéma de synthèse suivant : /(0R1) V HO CI-P 0-P(OR1)N(R2)2 N-R2 /Y / R2 X-\N / \ D-0 Z / / S S \R \R (la) ou selon le schéma de synthèse suivant : 30 35 \/Y X-\N D-0 6 HO R2, ,(0R1) Y ,N-P \ /X-W\ R2 N-R2 / R2 D-0 Z / S \R y 0-P(ORi)N(R2)2 Y X-W / \ D-0 Z / S R (la) - préparation du composé (lb) à partir du composé (II) selon le schéma de 10 synthèse suivant : 0 0- \ , 15 HO 1=) \/Q 1 H-OP ,0 ' T-0/ H \( X-W \ / \ OQ' X-W D-0 Z D-g \z / S / S\ \R R ( (Il) (lb) dans laquelle Q et Q' représentent, indépendamment l'un de l'autre, un 20 groupement benzène substitué ou non, - préparation du composé (Ic) à partir du composé (II) selon le schéma de synthèse suivant : O O O O HO \ 25 Y X-V\l/ D-0 \,z S \R 30 0 J N HOJ Nill Y 1 H H X-\/\// D-0/ \,z S \R (Ic) ou selon le schéma de synthèse suivant : 35 O O 7 HO 0 J N \/Y X-W I H D-d \ /Y X-W (II) \R D-0 (Ic) J OH 0r 0 O O HO J OH , /0 Y X-W D-d \ D, X, Y, Z, W, R, E, R1 et R2 ayant la même définition dans chacune de ces étapes que dans le composé (I). Un autre objet de l'invention concerne un oligomère susceptible d'être obtenu par oligomérisation d'un composé (I) selon l'invention, répondant à la formule (Ic) - (A)k (XVI)k dans laquelle : (Ic) a la même signification que ci-dessus, le groupement R du composé (Ic) peut en outre représenter H. k représente un entier compris entre 1 et 12, A représente (I'a) ou (I'b) où OR 0 P- 0 (I' a) = -o X-W et s / R (I'b) = dans lesquelles , X, Y, W, Z, R, R1 ont la même définition que pour le composé (I), R peut en outre re présenter H. Selon un mode de réalisation, l'oligomère selon l'invention répond à la formule (XIV)k: 10 R / Z O -W \ \ Y YV-X\ [ 1 1 0/Y \X 01 0 p D H I I k J 0N 111 OR, R Z/ (XIV)k dans laquelle, 15 E, D, X, Y, W, Z, R et R1 ont la même définition que pour le composé (I), R peut en outre représenter H et D peut en outre représenter H, k est un nombre entier compris entre 1 et 11. L'invention concerne également un procédé de préparation d'un oligonucléotide modifié comprenant au moins : 20 - une étape de greffage d'un composé (I) selon l'invention sur un oligonucléotide, OU - une étape de greffage d'un nucléotide sur un oligomère selon l'invention. Un autre objet de l'invention concerne un oligonucléotide modifié susceptible d'être obtenu par le procédé selon l'invention répondant à la formule (XIIa) suivante : 25 E - N2- ...- Nn_1- Nn- (ny Mm-1- Mm)p - dans laquelle, N1, ...N. représentent indépendamment les uns des autres un nucléotide, M1, _M., représentent indépendamment les uns des autres un nucléotide, 30 (I') représente un composé de formule (I'a) ou (I'b) tel que définis ci-dessus, n est un nombre entier compris entre 1 et 100, m est un nombre entier compris entre 1 et 100, y est un nombre entier compris entre 1 et 12, p représente 0 ou 1, 35 y' est un nombre entier compris entre 0 et 12 si p vaut 1 et, y' est égal à 0 si vaut 0, E représente un support solide. Un autre objet de l'invention concerne un oligonucléotide modifié susceptible d'être obtenu par le procédé selon l'invention répondant à la formule (XIIIa) suivante : (Ic) - (f)y_l - N1 - N2- ...- - -[M1 - M2 Mm-1- Mmb-(r )y- dans laquelle, N1, ...N. représentent indépendamment les uns des autres un nucléotide, M1, ... M., représentent indépendamment les uns des autres un nucléotide, (I') représente un composé de formule (I'a) ou (I'b) tel que définis ci-dessus, n est un nombre entier compris entre 1 et 100, m est un nombre entier compris entre 1 et 100, y est un nombre entier compris entre 1 et 12, y' est un nombre entier compris entre 0 et 12, p vaut 0 ou 1 si y' est différent de 0 et, si y' vaut 0 alors p vaut 0, y" est un nombre entier compris entre 0 et 12 si p vaut 1 et, si p vaut 0 alors y" vaut O. Selon un mode de réalisation, l'oligonucléotide modifié selon l'invention répond à la formule (XIIc) : HS, 0 0-X 'y_cy 0- H (X11c) Ô 0=P-0- Nn-i N2 N1 dans laquelle, n, y, N1, ont la même définition que ci-dessus, X, Y, Z, W ont la même définition que ci-dessus, Bn représente la base du n-ième nucléotide. Selon un mode de réalisation, l'oligonucléotide modifié selon l'invention répond à la formule (XIIIc) :35 N,, N3 N2 _ I O-P=0 HS oI Z 0 1 0 Il Il . P 0 Y'vv-X 0 P-0 I_ I_ 0 y 0 HS \ Z HO-YvvX dans laquelle, n, y, N ont la même définition que ci-dessus, X, Y, Z, W ont la même définition que ci-dessus, B1 représente la base du 1er nucléotide. Un autre objet de l'invention concerne un dispositif automatisé pour la synthèse de nucléotides comportant au moins des réservoirs distincts contenant : - des nucléotides, - des activateurs de couplage et - des produits de lavage, des moyens mécaniques de prélèvement et de distribution d'échantillons de produits, ainsi que des moyens informatiques permettant la mise en oeuvre contrôlée de ces moyens mécaniques, ainsi que : au moins un réservoir dans lequel est placé un support solide greffé par un oligomère selon l'invention, et/ou au moins un réservoir contenant un composé (Ia) ou un composé (Ib) selon l'invention. Un autre objet de l'invention concerne un substrat greffé par au moins un oligonucléotide modifié selon l'invention, ledit substrat comportant au moins une zone de réception revêtue d'un film d'or ou de platine ou greffée par des groupements comportant au moins une double liaison carbone-carbone ou une triple liaison carbone-carbone ou des groupements halogénoacétamide, de préférence des groupements maléimide et/ou acrylamide, ledit substrat étant en métal dans le cas du film d'or et en plastique dans le cas du greffage par des groupements comportant au moins une double liaison carbone-carbone ou une triple liaison carbone-carbone ou des groupements halogénoacétamide, de préférence des groupements maléimide et/ou acrylamide. Selon un mode de réalisation de l'invention, les groupements comportant au moins une double liaison carbone-carbone ou une triple liaison carbone-carbone sont choisis parmi les alcènes activés par une fonction carbonyle en alpha, de préférence les alcènes sont choisis parmi les groupements maléimide, acrylamide. Selon un mode de réalisation, les groupements halogénoacétamide sont choisis parmi les groupements bromoacétamido et iodoacétamido. Selon un mode de réalisation de l'invention, les groupements comportant au moins une triple liaison carbone-carbone sont choisis parmi les alcynes activés par une fonction carbonyle en alpha, de préférence les alcynes sont choisis parmi les groupements 2-propynamide. Selon un mode de réalisation, le substrat en métal est en cuivre ou en titane et/ou le substrat en plastique est en polystyrène. L'invention propose également un kit de test comprenant : - au moins un substrat comportant au moins une zone de réception revêtue d'un film métallique d'or ou de platine ou d'un substrat greffé par des groupements comportant au moins une double liaison carbone-carbone ou une triple liaison carbone-carbone ou des groupements halogénoacétamide, de préférence des groupements maléimide et/ou acrylamide, - au moins un oligonucléotide modifié selon l'invention. Un autre objet de l'invention concerne une utilisation d'un substrat selon l'invention pour réaliser des tests d'affinité entre un oligonucléotide et une autre molécule. Un autre objet de l'invention concerne une utilisation d'un composé comprenant au moins deux fonctions thiol pour le greffage d'oligonucléotides sur une surface modifiée par des groupements comportant au moins une double liaison carbone-carbone ou une triple liaison carbone-carbone ou des groupements halogénoacétamide, de préférence des groupements maléimide ou acrylamide pour la mise en place d'un test de diagnostic. Les avantages de la présente invention sont les suivants : - le composé thiol de l'invention est peu coûteux, - le composé thiol de l'invention est obtenu par un procédé simple à mettre en oeuvre, - le composé thiol de l'invention peut être introduit une ou plusieurs fois dans un oligonucléotide de manière simple et efficace, - l'oligonucléotide greffé de l'invention peut être immobilisé de manière stable sur une surface d'or, ou sur une surface greffée, notamment avec des groupements maléimide ou acrylamide, - les oligonucléotides de l'invention peuvent être fabriqués par un procédé totalement automatisable. D'autres caractéristiques et avantages de l'invention apparaîtront à la lecture de la description qui suit d'un mode de réalisation préféré de l'invention, donnée à titre d'exemple et en référence aux dessins annexés. BREVE DESCRIPTION DES FIGURES La figure 1 représente un schéma décrivant un procédé de synthèse des composés (I). Les figures 2A et 2B représentent respectivement un schéma décrivant un procédé de synthèse d'un oligomère des composés de l'invention à partir de composés (Ia) et à partir de composés (lb). La figure 3 représente un schéma décrivant un procédé de synthèse d'un composé (XIIc) oligonucléotide greffé par un oligomère de (I) à son extrémité 5'. La figure 4 représente un schéma exposant un procédé de synthèse d'un composé (XIIIc) oligonucléotide greffé par un oligomère de (I) à son extrémité 3'. La figure 5 représente un histogramme du taux de greffage d'oligonucléotides modifiés sur une surface d'or. La figure 6 représente un schéma exposant la stabilité du greffage d'oligonucléotides modifiés sur une surface d'or en fonction du temps à 60°C. La figure 7 représente un schéma exposant la stabilité du greffage d'oligonucléotides modifiés sur une surface d'or en fonction du temps à 80°C. La figure 8 représente un diagramme schématisant les résultats d'un test ELOSA avec détection par fluorescence. La figure 9 représente les résultats d'un test d'hydridation sonde/cible avec une sonde monothiol. La figure 10 représente les résultats d'un test d'hydridation sonde/cible avec une sonde dithiol. La figure 11 représente les résultats d'un test d'hydridation sonde/cible avec une sonde tétrathiol. La figure 12 représente les résultats d'un test d'hydridation sonde/cible avec une sonde tétrathiol greffée sur surface d'or. La figure 13a représente les réactions entre l'oligonucléotide modifié selon l'invention et la surface greffée par des groupements alcényles ou alcynyles activés. La figure 13b représente les réactions entre l'oligonucléotide modifié selon l'invention et la surface greffée par des groupements alcényles ou alcynyles avec activation lumineuse (X, = 265 nm). EXPOSE DES MODES DE REALISATION DE L'INVENTION La présente invention concerne la préparation et l'utilisation de composés de structure phosphoramidite, H-phosphonate ou de composés reliés à un support solide présentant une fonction thiol protégée. Ces composés thiol sont destinés à être introduits dans des oligonucléotides. Les oligonucléotides ainsi obtenus peuvent présenter plusieurs fonctions thiol. Composé thiol Les composés de la présente invention répondent à la formule (I) suivante : T (I) \R dans laquelle : T est un groupement choisi parmi -0-P(OR1)N(R2)2, -0-PH(0)0-, -0C(0)JC(0)NH-E, o R1 est choisi parmi les groupements 2-cyanoéthyle, R'iR'2R'3SiCH2CH2, et R'1, R'2, R'3, identiques ou différents, représentent un groupement choisi parmi les alkyles linéaires ou ramifiés comportant de 1 à 12 atomes de carbone et les aryles en C6-C12, o R2 est choisi parmi les groupements alkyles linéaires ou ramifiés comportant de 1 à 12 atomes de carbone, pyrrolidine o J est choisi parmi une simple liaison, un groupement -CH2-, -CH2CH2-, -CH2OCH2-, -CH2OPhOCH2- où Ph est un benzyle, o E représente un support solide, D est un groupement protecteur des alcools, W est choisi parmi les groupements alcanes tri-yle en C1-C12, Z est choisi parmi les groupements alkoxy en C1-C12, cyclohétéroalkyles oxygéné ou azoté en C3-C12, NCO-alkyles en C1-C12, CON-alkyles en C1-C12, Y est choisi parmi les groupements alkyles linéaires ou ramifiés en C1-C12, aminoalkyles en C1-C12, alkoxy en C1-C12, cycloalkyles en C3-C12, cyclohétéroalkyles oxygénés ou azotés en C3-C12, X est choisi parmi les groupements alkyles linéaires ou ramifiés en C1-C12, 5 aminoalkyles en C1-C12, alkoxy en C1-C12, cycloalkyles en C3-C12, cyclohétéroalkyles oxygénés ou azotés en C3-C12, R est choisi parmi les groupements acyles en C1-C12, S-alkyles en C1-C12, S-aryles en C6-C12, S-2-pyridine, S-hétéroalkyles oxygénés ou azotés en C1-C12, S- cycloalkyles en C3-C12, S-cyclohétéroalkyles oxygénés ou azotés en C3-C12. 10 Le composé (I) peut être distingué en trois sous-composés (Ia), (Ib) et (Ic) répondant aux formules (Ia), (Ib) et (Ic) ci-dessous dans lesquelles les paramètres X, Y, Z, R, R1, R2 et D ont la même définition qu'exposée ci-dessus pour la formule (I) : 15 Y- 0-P(OR1)N(R2)2 (Ia) X-VV D-0/ \ R 20 (lb) R 25 OJ (Ic) H Y X-V\if D-0/ 30 R De préférence, R1 est choisi parmi les groupements 2-cyanoéthyle et R'iR'2R'3SiCH2CH2, et R'1, R'2, R'3 identiques ou différents représentent un groupement choisi parmi les groupements alkyles linéaires ou ramifiés comportant de 35 1 à 6 atomes de carbone, le phényl ; préférentiellement R1 est choisi parmi les groupements 2-cyanoéthyle et R'iR'2R'3SiCH2CH2, et R'1, R'2, R'3 identiques ou différents représentent un groupement choisi parmi les groupements alkyles linéaires ou ramifiés comportant de 1 à 3 atomes de carbone, le phényl ; encore plus préférentiellement R1 est choisi parmi les groupements 2-cyanoéthyle, 2- (triméthylsily1)éthyle, 2-(triphénylsily1)éthyle, 2-(diphénylméthylsilyl)éthyle. De préférence, R2 est choisi parmi les groupements alkyles linéaires ou ramifiés comportant de 1 à 6 atomes de carbone. De préférence, R2 est un groupement isopropyle (iPr). De préférence, le support solide ^ est choisi parmi les résines, en particulier parmi les résines à base de polystyrène, polyacrylamide, polyéthylène glycol, cellulose, polyéthylène, polyester, latex, polyamide, polydiméthylacrylamide, les polymères hydrophiles synthétiques ou naturels, les billes de verre, les gels de silice. De préférence, W est choisi parmi les groupements alcanes tri-yle en C1-C6, plus particulièrement parmi les groupements CH, CCH3, CCH2CH3, cyclohexyle, et un noyau benzyle. De préférence, D est choisi parmi les groupements protecteurs des alcools qui permettent une déprotection orthogonale par rapport aux autres groupements du composé (I). Plus particulièrement, D est choisi parmi le 4,4'-diméthoxytrityle (DMTr), le 9-phenylxanthen-9-yl (pixyl) ou le Fluorenylmethyloxycarbonyl (Fmoc). Le groupement protecteur pixyl est décrit notamment dans le document Chattopadhyaya et Reese, Chem. Soc. Chem. Comm., 1978, 639-640. De préférence, Z est choisi parmi les groupements aminoalkyles en C1-C6, alkoxy en C1-C6, cyclohétéroalkyles oxygéné ou azoté en C3-C6, NCO-alkyles en C1-C6, CON-alkyles en C1-C6. De préférence, Y est choisi parmi les groupements alkyles linéaires ou ramifiés en C1-C6, aminoalkyles en C1-C6, alkoxy en C1-C6, cycloalkyles en C3-C6, cyclohétéroalkyles oxygénés ou azotés en C3-C6. De préférence, X est choisi parmi les groupements alkyles linéaires ou ramifiés en C1-C6, aminoalkyles en C1-C6, alkoxy en C1-C6, cycloalkyles en C3-C6, cyclohétéroalkyles oxygénés ou azotés en C3-C6. De préférence, R est choisi parmi les groupements acyles en C1-C12, S-alkyles en C1-C6, S-aryles en C6, S-hétéroalkyles oxygénés ou azotés en C6, S-cycloalkyles en C6, S-cyclohétéroalkyles oxygénés ou azotés en C6. Selon un mode de réalisation, les alkyles linéaires ou ramifiés sont choisis parmi les groupements méthyle, éthyle, propyle, butyle, pentyle, hexyle, heptyle, octyle, nonyle, décyle, undécyle, dodécyle, isopropyle, isobutyle, tert-butyle. Selon un mode de réalisation, les aminoalkyles sont choisis parmi les groupements aminométhyle, aminoéthyle, aminopropyle, aminobutyle, aminopentyle, aminohexyle, aminoheptyle, aminooctyle, aminononyle, aminodécyle, aminoundécyle, aminododécyle, aminoisopropyle, aminoisobutyle, amino-tert-butyle comprenant un ou plusieurs atomes d'azote. Selon un mode de réalisation, les alkoxy sont choisis parmi les groupements méthoxy, éthoxy, propyloxy, oxybutyloxy, pentyloxy, hexyloxy, heptyloxy, octyloxy, nonyloxy, décyloxy, undécyloxy, dodécyloxy, isopropyloxy, isobutyloxy, tert- butyloxy comprenant un ou plusieurs atomes d'oxygène. Selon un mode de réalisation, les cycloalkyles sont choisis parmi les cycles, comprenant éventuellement une ou plusieurs insaturations, comprenant entre 3 et 12 atomes de carbone, de préférence 6 atomes de carbone. Selon un mode de réalisation, les cyclohétéroalkyles sont choisis parmi les cycles substitués par un ou plusieurs atomes d'azote et/ou d'oxygène, comprenant éventuellement une ou plusieurs insaturations et comprenant entre 3 et 12 atomes de carbone, de préférence 5 atomes de carbone et un atome d'azote ou d'oxygène. Selon un mode de réalisation, les NCO-alkyles et CON-alkyles sont des groupements dans lesquels les alkyles peuvent être des alkyles linéaires ou ramifiés choisis parmi les groupements méthyle, éthyle, propyle, butyle, pentyle, hexyle, heptyle, octyle, nonyle, décyle, undécyle, dodécyle, isopropyle, isobutyle, tert-butyle. Selon un mode de réalisation, R2 est un groupement isopropyle (iPr) et/ou R1 est un groupement cyanoéthyle. Selon un mode de réalisation préféré, le composé thiol (Ia) est le composé (VI) répondant à la formule suivante : SR (CH2)n R N/ R2 (VI) 0 ORi dans laquelle, n est un nombre entier compris entre 1 et 12, de préférence compris entre 1 et 6, 30 R, R1, R2 et D ont la même définition que ci-dessus pour (Ia). De préférence, R2 est un groupement isopropyle (iPr) et R1 est un groupement cyanoéthyle. De préférence, R est un groupement acétyle. De préférence, D est le 4,4'-diméthoxytrityle. 35 Selon un autre mode de réalisation, le composé thiol (Ia) est le composé (VII) répondant à la formule suivante : DO SR (CH2)n NH R2 N ,P, R2 \ORi O (VII) DO dans laquelle, n est un nombre entier compris entre 1 et 12, de préférence compris entre 1 et 6, R, R1, R2 et D ont la même définition que ci-dessus pour (Ia). De préférence, R2 est un groupement isopropyle (iPr) et R1 est un groupement cyanoéthyle. De préférence, R est un groupement acétyle. De préférence, D est le 4,4'-diméthoxytrityle. Selon un mode de réalisation, le composé thiol (Ic) est le composé (VIII) répondant à la formule suivante : DO SR (CH2)n O O 0 J N H (VIII) dans laquelle, n est un nombre entier compris entre 1 et 12, de préférence entre 1 et 6. R, D et E ont la même définition que ci-dessus pour (Ic). De préférence, R est un groupement acétyle. De préférence, J est un groupement éthyle. De préférence, D est le 4,4'-diméthoxytrityle. Selon un mode de réalisation, le composé thiol (Ia) est le composé (IX) de formule : SR (CH2)n 0 (IX) 0 DO0 ,./R2 0- P \ I R2 OR1 dans laquelle, n est un nombre entier compris entre 1 et 12, de préférence entre 1 et 6, R, R1, R2 et D ont la même définition que ci-dessus pour (Ia). De préférence, R2 est un groupement isopropyle (iPr) et R1 est un groupement cyanoéthyle. De préférence, R est un groupement acétyle. De préférence, D est le 4,4'-diméthoxytrityle. Selon un mode de réalisation, le composé thiol (Ia) est le composé (X) de formule : (X) NH 0 (a-12)n dans laquelle, SR n est un nombre entier compris entre 1 et 12, de préférence entre 1 et 6, R, R1, R2 et D ont la même définition que ci-dessus pour (Ia). De préférence, R2 est un groupement isopropyle (iPr) et R1 est un groupement cyanoéthyle. De préférence, R est un groupement acétyle. De préférence, D est le 4,4'-diméthoxytrityle. De préférence, R2 est un groupement isopropyle (iPr) et R1 est un groupement cyanoéthyle. Selon un mode de réalisation, le composé thiol (Ia) est le composé (XI) de formule : RS H2) n 0, H2) n HN O DO n H N H N 0'N (XI) n R2 OR, dans laquelle, n est un nombre entier compris entre 1 et 12, de préférence compris entre 1 et 6, R, R1, R2 et D ont la même définition que ci-dessus pour (Ia). De préférence, R2 est un groupement isopropyle (iPr) et R1 est un groupement cyanoéthyle. De préférence, R est un groupement acétyle. R 2 R ..---- 2 N DO/\/. 0 ORi De préférence, D est le 4,4'-diméthoxytrityle. Procédé de fabrication Le procédé de fabrication des composés (Ia), (Ib) et (Ic) est représenté sur le schéma de la figure 1. Les composés (Ia), (Ib) et (Ic) sont obtenus à partir du même composé (II) présentant la formule suivante : HO \Y \Alf D-0 \R dans laquelle, D, X, W, Y, Z et R ont la même définition que dans le composé thiol (I). Le composé de formule (Ia) peut être obtenu selon la réaction représentée sur / \ R2 le schéma suivant : D-0 Z D-0 Z X-V\l/ /N-R2 HO CI-P (0R1 0-P(OR1)N(R2)2 \Y \ / V ) / \ X - VV/Y / / S S \R R (II) (la) ou selon la réaction représentée sur le schéma suivant, de préférence en présence du sel de diisopropylamine tétrazolure : HO R2, /(0R1) y 0- P (0 R )N (R2)2 Y Y ,N-P X- W\ \ D-0 /X-W\ R2 N-R2 R R2 D-0 \R (Il) (la) Le composé de formule (lb) peut être obtenu selon la réaction représentée sur le schéma suivant : HO OQ /YH-P 1-0 ' X-W O D-0 Q' \R (II) 0 0- /P,H y-0 /X-W\ D-0 (I b) dans laquelle, Q et Q' représentent, indépendamment l'un de l'autre, un groupement benzène substitué ou non. La réaction précédente d'obtention du composé (Ia) ou (Ib) s'effectue à partir du composé (II), de préférence en présence d'une base, par exemple la diisopropyléthylamine (DIEA), dans un solvant anhydre, tel que le dichlorométhane anhydre. Le composé de formule (Ic) est également obtenu à partir du composé (II) mais de préférence selon l'étape de réaction représentée sur le schéma suivant : O O O O HO \Y X-W D-0/ (11) R 0 JN HO J 1 H H Y X-W D-0/z (Ic) R La réaction précédente d'obtention du composé (Ic) s'effectue de préférence dans un solvant anhydre, tel que la pyridine, en présence d'une base, telle que la triéthylamine. peut également obtenir le composé (Ic) selon le schéma réactionnel O 0 J H /Y \N D-0 (Ic) On suivant : HO Y \N D-0/ R \C1,1/4 >0 0 /n-NH2 HO OH 0 0 R Un objet de la présente invention est le composé (II) de formule ci-dessus dans laquelle les groupements D, X, W, Z, Y et R ont la même définition que dans le composé (I). Le composé de formule (II) peut être obtenu à partir du composé (III) selon l'étape de réaction décrite ci-dessous : HO HO \Y Y X-W RS-K+ X-W D-0/ \ D-0 \ G S" (III) (II) dans laquelle G est un halogène, de préférence le brome ou l'iode. La réaction décrite ci-dessus s'effectue de préférence dans un solvant anhydre, tel que le toluène anhydre et en présence d'un éther couronne. Le composé (III) peut être obtenu à partir du composé (IV) selon l'étape de réaction décrite ci-dessous : HO G-Z"-G' HO \Y X-W \Y X-W D-0"Z' D-0/ \z (IV) G (III) dans laquelle, G et G' sont des atomes d'halogène identiques ou différents, de préférence G et G' sont des atomes de brome ou d'iode, Z' est un groupement aminoalkyle en C1-C12, alkoxy en C 1 -C12, cyclohétéroalkyle oxygéné ou azoté en C3-C12, NCO-alkyle en C 1 -C12, CON-alkyle en C1-C12, Z" est un groupement alkyle linéaire ou ramifié en C1-C12, aminoalkyle en Cl- C12, alkoxy en C1-C12, cycloalkyle en C3-C12, cyclohétéroalkyle oxygéné ou azoté en C3-C12, NCO-alkyle en C1-C12, CON-alkyle en C1-C12, le composé dihalogéné G-Z"-G' étant destiné à réagir avec le groupement Z' du compose (IV) pour conduire à la formation du groupement Z-G du composé (III). L'étape d'obtention du composé (III) s'effectue de préférence en présence d'un hydrure alcalin, tel que NaH. Le composé (IV) peut être obtenu à partir du composé commercial (V) par protection de la fonction alcool, selon l'étape de réaction suivante : HO \Y X-V\l/ HO "ZI (V) (IV) Cette étape de protection de la fonction alcool est effectuée dans des conditions bien connues de l'homme du métier, en fonction du choix de D. Selon un mode de réalisation, le composé (IV) est obtenu à partir du composé (V) par réaction avec le 4,4'-chlorure de diméthoxytrityle (DMTr-C1) de préférence dans un solvant, tel que la pyridine afin de protéger la fonction alcool. Selon un autre mode de réalisation, le composé (IV) est obtenu à partir du composé (V) à partir du chlorure de 9-phénylxantèn-9-yle (pixyl-C1) dans les conditions décrites dans le document Chattopadhyaya et Reese, Chem. Soc. Chem. Comm., 1978, 639-640. Selon un autre mode de réalisation, le composé (IV) est obtenu à partir du composé (V) par réaction avec le chlorure de fluorenylmethyloxycarbonyle (Fmoc-C1) dans des conditions bien connues de l'homme du métier. Dans les formules précédentes (II) à (V), X, Y, W, Z, D, R, R1, R2 ont les mêmes définitions que dans la définition du composé (I) indiquée ci-dessus. De préférence, le composé (V) de départ est le 1,1,1-tris(hydroxyméthyl)éthane ou l'acide 2,2-bis(hydroxyméthyl) propionique ou le 1,3,5- tris(hydroxyethoxy)benzène ou le 1,3,5-tris(hydroxyméthyl)cyclohexane ou le 2- amino-1,3-propanediol. Oligomère du composé thiol Un objet de la présente invention concerne un oligomère formé à partir de composés thiol de formule (I) précédemment décrits. Le procédé de synthèse de tels oligomères est décrit sur le schéma de la figure 2A pour l'oligomérisation de composés de formule (Ia) et sur le schéma de la figure 2B pour l'oligomérisation de composés de formule (lb). Dans une première étape, la fonction alcool du composé (Ic) est déprotégée pour conduire au composé (Ic.1). Cette étape de déprotection s'effectue par des moyens bien connus de l'homme du métier, de préférence en présence de l'acide di ou trichloroacétique pour les groupements DMTr et Pixyl et de pipéridine pour le groupement Fmoc.35 O O O O 0 J N I H /Y X-W DO \ HO (Ici) R S\ (1c) S\R Ensuite, le composé (Ic.1) réagit avec le composé (Ia) ou (Ib) pour conduire respectivement au composé phosphitetriester (XIV')1 ou H-phosphonate diester (XV')1. X-W 0 J N I H /Y 0 0 0 0 J-L )- Ill )L )-L Ill .'' 0-P(ORi)N(R2)2 0 J N 0 J N I H /Y I H Y /Y X-W ORi x_W ,X-W + / \ I / \ HO \Z Y D-0 Z ,O-P-O / Z / S / / S\ \R X-W / \ S\ R D-0 Z R / (la) S' (Ici) (XIV')1 O O 0 00 ).L 0- 0 \ . J)-L NIII I H 0 J Nill , I H / P H 0 / 7-0 II I Y ,X-W, Y 20x-w , x-w\ ,O-P-O \ S/ Z D-0 z H HO + Y I 1 S Z . / X-W S\R / \ R .R D-0 Z / S\ (XV')1 (Ic.1) (lb) R 25 Puis, le composé (XIV')1 est oxydé de préférence en présence de diiode, le diode étant ensuite déplacé par de l'eau apportant l'atome d'oxygène du lien phosphate triester, pour conduire au composé phosphotriester (XIV)1. Cette étape d'oxydation s'effectue après chaque étape de couplage entre un composé (XIV)i et un composé (Ia). R 30 0 0 OR1 x_ 0 0 )" 111 12/H20 I / 111 0 J N/ , 0-P -0 0 J N/ H Y 8 H Y x-w Y OR1 x_W I , 0-P -0 Y / X-W s 35 D-0 D-0 (XIV')1 (XIV)1 R R Puis, de la même manière, le composé (XIV)1 réagit avec (k-1) composés (Ia) pour conduire, après (k-1) oxydations, au composé (XIV)k : o o o o )11 0 J N H Y X-V\/ O z R k 10 et le composé (XV')1 est déprotégé sur sa fonction alcool pour donner (XV")1 qui réagit avec (k-1) composés (lb) pour conduire au composé (XV')k : Y OR1 x_W I , Y X- \N D-0 0 J N I H (k-1)Ia OR 0 D x- w\ 8 R R (XIV)k R (XV'')1 0 J N H 0 Y Il ,X- Y I X- W\ H \ H-0 Z R 15 20 o o (k-1) lb D k (XV') k Puis, le composé (XV')k est oxydé, de préférence en présence de diiode et d'eau pour conduire au composé phosphodiester (XV)k. O O J-L 11 0 J N H Y O-P 12/1-120 y- I X-V\i1 D O - s (XV') k Enfin, une dernière étape éventuelle consiste à déprotéger les composés (XIV)k ou (XV)k pour conduire au même composé (I)k. 25 30 O O-P Y I X-VV H D O / -k O O O J-L 11 0 J N H Y X- \N O k R (XV) k OH /Y X- \N g z 35 O I I H k H De préférence, l'oligomère résulte de l'oligomérisation de 2 à 12 composés (I), en particulier entre 2 et 8 composés (I), c'est-à-dire que l'oligomère peut comprendre 2, 3, 4, 5, 6, 7 ou 8 composés (I). De préférence, l'oligomère thiol destiné à être greffé sur une surface d'or comprend entre 3 et 8, avantageusement entre 4 et 8 composés (I) et l'oligomère thiol destiné à la conjugaison avec un substrat greffé par un groupement comportant au moins une double liaison carbone-carbone ou une triple liaison carbone-carbone ou un groupement halogénoacétamide, notamment du maléimide ou de l'acrylamide, comprend entre 2 et 6 composés (I). Selon un mode de réalisation, l'oligomère est fabriqué uniquement à partir de composés de formule (Ia) ou de composés de formule (Ib). L'oligomérisation s'effectue par réaction entre la fonction alcool déprotégée d'un premier composé (I) et la fonction phosphoramidite ou H-phosphonate d'un second composé (I). Il est également possible de prévoir la fabrication d'un oligomère à partir d'un mélange de composés (Ia) et de composés (Ib), ce mode de réalisation présentant moins d'intérêt. De préférence, l'oligomère est fabriqué en utilisant la chimie des phosphoramidites, c'est-à-dire par oligomérisation de composés de type (Ia). L'oligomérisation peut être effectuée sur support solide ou en solution. De préférence, l'oligomérisation est effectuée sur support solide. En effet, 20 l'oligomérisation en solution implique des étapes de purifications par chromatographie, étapes non économiquement viables, en particulier pour les petites quantités requises dans les applications en diagnostic. Un autre objet de l'invention décrite ci-dessus est un support solide greffé par un oligomère d'un composé (Ia) ou d'un composé (lb) et répondant à la formule (XVI)k 25 ci-dessous : (Ic) - (I')k (XVI)k dans laquelle : 30 k représente un entier compris entre 1 et 11 (Ic) a la même signification que ci-dessus, (I') représente (I'a) ou (I'b), avec : 35 (I' a) = et R (I'b) = X-W o E formé à partir d'un composé (Ic) et de la formule (XIV)k suivante : o o o L'oligomère sur composés de formule (Ia) 0 P 0 / R support solide répond à 0 J N H OR X-W 0/ \z 0 P 0 (XIV)k x-w R D 0 / _k R dans laquelle E, D, X, Y, W, Z, J, R et R1 ont la même définition que ci-dessus et R peut en outre représenter H, k est un nombre entier compris entre 1 et 11. L'oligomère sur support solide E formé à partir d'un composé (Ic) et de composés de formule (lb) répond à la formule (XV)k suivante : o o 0 J N)11 H 0 X-W (XV)k ,0 \ 0/ P s/ X-W R k D 0 R dans laquelle E, D, X, Y, W, Z, J et R ont la même définition que ci-dessus et R peut en outre représenter H, k est un nombre entier compris entre 1 et 11. Dans le cas où l'oligomère est formé sur support solide E à partir d'un composé (Ic) et de composés (Ib), le composé obtenu (XV)k répond à la même formule que le composé (XIV)k mais dans laquelle R1 est un atome d'hydrogène après oxydation des liens H-phosphonate diesters. A l'issue de la réaction d'oligomérisation, on peut prévoir de déprotéger les fonctions thiol par des méthodes classiques et alors R représente H. Oligonucléotides modifiés Un autre objet de la présente invention concerne un oligonucléotide modifié, comprenant au moins un nucléotide, de préférence au moins deux nucléotides et au moins un composé thiol (I) précédemment décrit. Dans la présente demande, un oligonucléotide désigne une chaîne comprenant entre 2 et 100 nucléotides. Le greffage du composé thiol selon l'invention s'effectue en position 3', dans la chaîne, ou en position 5' d'un oligonucléotide. Le procédé de préparation d'un tel oligonucléotide modifié comprend au moins : - une étape de greffage d'un composé (I) sur un oligonucléotide pour donner un 5'-thiol oligonucléotide, ou - une étape de greffage d'un nucléotide sur un oligomère d'un composé (I) pour donner un 3'-thiol oligonucléotide. Selon un mode de réalisation de l'invention, l'oligonucléotide greffé répond à la formule (XIIa) suivante : ^ - Ni - N2- ...- N._1- Nn (r)y -(Mi - (r)y, (XIIa) dans laquelle, N1, ...N. représentent indépendamment les uns des autres un nucléotide, M1, _M., représentent indépendamment les uns des autres un nucléotide, (I') représente un composé de formule (I'a) ou (I'b), n est un nombre entier compris entre 1 et 100, m est un nombre entier compris entre 1 et 100, y est un nombre entier compris entre 1 et 12, p représente 0 ou 1, y' est un nombre entier compris entre 0 et 12 si p vaut 1 et, y' est égal à 0 si p vaut 0, ^ représente un support solide. L'oligonucléotide modifié (XIIa) présente un ou plusieurs composés thiol en position 5' d'un oligonucléotide N ou bien dans la chaîne nucléotidique. Ce composé est obtenu par un greffage d'un composé (I) suivi par une élongation de l'oligomère issu de (I) en position 5' d'un oligonucléotide. Puis, dans le cas où p = 1, l'élongation de la chaîne nucléotidique se poursuit. Puis, de la même manière, on peut envisager le greffage d'un ou plusieurs composés (I) supplémentaires en position 5' de l'oligonucléotide M. Un schéma d'obtention du composé (XIIa) est décrit sur la figure 3 sur laquelle les composés thiol sont de type (Ia) et p est égal à 0. Les trois premières étapes de fabrication du composé (XIIa) permettent la synthèse d'un oligonucléotide. La synthèse de l'oligonucléotide est effectuée sur support solide par une méthode classique bien connue de l'homme du métier. Lors de la première étape, un premier nucléotide est greffé sur un support solide, puis les autres nucléotides sont greffés suivant des méthodes de synthèse bien connues de l'homme du métier. Le composé suivant est obtenu : (XIIa.1) Nn-1 Puis, un autre nucléotide est greffé par une méthode identique pour conduire au composé de formule (XIIa.2). Lors de l'étape suivante, un composé thiol selon l'invention de type (Ia) est greffé en position 5' de l'oligonucléotide (XIIa.2) pour conduire au composé (XIIa.3) : ^ - Ni - N2- ...- N._1- Nn (I'a) (XIIa.3) Lors de cette étape, le greffage se fait de manière classique par réaction de la fonction phosphoramidite du composé (Ia) avec la fonction alcool en position 5' du nucléotide terminal du composé (XIIa.2). Sur le schéma de la figure 3, un exemple de synthèse est décrit avec l'oligomérisation du composé thiol de type (Ia) ; un procédé de synthèse similaire est utilisé pour la synthèse d'oligonucléotides modifiés avec des composés thiol de type (lb). Ensuite, l'oligomérisation telle que décrite précédemment, notamment sur les figures 2A et 2B, se poursuit à partir du composé (XIIa.3) ci-dessus, par réaction avec un ou plusieurs composés (Ia) ou (Ib) pour conduire au composé (XIIa.4) de formule : ^ - Ni - N2- ...- N.- (I' a)y ou en formule développée (dans le cas où p = 0) :35 RAS NZ 0 DiO-X-- \y 0 i Il R10 y0 (:)),,eBn 0 O=IP-OR1 : n-1 rçl2 10 (XIIa.4) dans laquelle, E, D, R, X, Y, W, Z, R1 ont la même définition que pour le composé (I) et R1 peut en outre représenter H, 15 n, y et N1, N2, ont la même définition que pour le composé (XIIa), Bn représente une base classiquement utilisée dans une chaîne nucléotidique. Dans le cas où l'élongation de l'oligomère s'effectue avec des composés de type (Ib), l'oligonucléotide modifié présente une structure similaire à celle de l'oligonucléotide modifié (XIIa.4) mais dans laquelle R1 représente H. 20 Un greffage ultérieur de composés nucléotides M1, M2, ...Mn, est ensuite possible pour aboutir au produit (XIIa) avec p = 1. Dans ces cas, l'élongation s'effectue également sur support solide. Cette étape de greffage s'effectue de manière classique par des méthodes connues de l'homme du métier. 25 Selon un autre mode de réalisation de l'invention, l'oligonucléotide greffé répond à la formule (XIIIa) suivante : (Ic) - (r )3,-1- N1 - N2- ...- Nn_1- Nn - -[M1 - M2 Mm-1 MA1)-(r)Y" (XIIIa) 30 dans laquelle, N1, ...Nn représentent indépendamment les uns des autres un nucléotide, M1, ... Mn, représentent indépendamment les uns des autres un nucléotide, (I') représente un composé de formule (I'a) ou (I'b), n est un nombre entier compris entre 1 et 100, 35 m est un nombre entier compris entre 1 et 100, y est un nombre entier compris entre 1 et 12, y' est un nombre entier compris entre 0 et 12, p vaut 0 ou 1 si y' est différent de 0 et, si y' vaut 0 alors p vaut 0, y" est un nombre entier compris entre 0 et 12 si p vaut 1 et, si p vaut 0 alors y" vaut 0. Un schéma représentant un mode de synthèse du composé (XIIIc) est décrit sur la figure 4 en utilisant un oligomère formé à partir d'un composé de type (Ic) où J est un groupement éthyle, et de composés de type (lb). La synthèse du composé de formule (XIIIc) comprend une première étape consistant en l'oligomérisation du composé thiol selon l'invention de formule (I) dont le procédé est décrit précédemment pour conduire au composé de formule (XIIIa 1): (Ic) - (4_1 (XIIIa 1) dans laquelle, (Ic) a la même définition que précédemment, (I') représente un groupement de type (I' a) ou (I"b S-R (I"b) = 0 (XV )37 Il VV , -P-O-Y X-0- 1 H ou en formule développée dans le cas où (I') représente (I"b) : R \ R s \ s / / z z \ \YV 0 -VV [ H Y \ 1 -X\( x 0 D Y 0 PRO H 1 y ErNJ 0 H Dans une seconde étape, un premier nucléotide N1 est greffé sur l'oligomère de formule (XIIIa 1) pour conduire au composé de formule (XIIIa 2) ci-dessous : (Ic) - (44- N1 (XIIIa 2) Cette étape de greffage s'effectue par réaction entre la fonction alcool déprotégée au bout de la chaîne d'oligomère du composé (XIIIa 1) et la fonction phosphoramidite ou H-phosphonate du premier nucléotide N1. L'oligonucléotide modifié est ensuite synthétisé par n'importe quelle méthode connue de l'homme du métier, notamment une méthode classique bien connue de l'homme du métier par réaction entre la fonction alcool en 5' du premier nucléotide présent sur l'oligomère du composé thiol et la fonction phosphoramidite ou H- phosphonate en position 3' d'un second nucléotide. La synthèse se poursuit par des étapes successives similaires d'élongation de la chaîne nucléotidique bien connues de l'homme du métier pour conduire au composé de formule (XIIIa) Un autre objet de la présente invention concerne les composés obtenus à partir des composés de formule (XIIa) et (XIIIa) ci-dessus après coupure de la liaison qui relie l'oligonucléotide modifié au support solide. La coupure de la liaison s'effectue au niveau de la fonction ester. Ainsi, selon un mode de réalisation de l'invention, l'oligonucléotide non supporté présente la structure (XIIb) suivante : N1 - N2- ...- N._1- Nn (r)y -(M1 -...- Mr.)p - (I')y, (XIIb) dans laquelle, N1, ...N. représentent indépendamment les uns des autres un nucléotide, M1, ...M., représentent indépendamment les uns des autres un nucléotide, (I') représente un composé de formule (I'a) ou (I'b), n est un nombre entier compris entre 1 et 100, m est un nombre entier compris entre 1 et 100, y est un nombre entier compris entre 1 et 12, p représente 0 ou 1, y' est un nombre entier compris entre 0 et 12 si p vaut 1 et, y' est égal à 0 si p vaut 0. Le retrait du support s'effectue en deux étapes avec premièrement une base forte non nucléophile (piperidine ou DBU) pour éliminer les groupements cyanoéthyles si présents (cas des phosphoramidites) et deuxièmement par un procédé classique connu de l'homme du métier, de préférence par un traitement du composé (XIIa) avec de l'hydroxyde d'ammonium (NH4OH). Il est nécessaire d'éliminer les groupements cyanoéthyles avant la déprotection des groupements thiols car ils forment de l'acrylonitrile lors de leur élimination qui réagit fortement avec les fonctions thiol. Selon un autre mode de réalisation de l'invention, l'oligonucléotide non supporté présente la structure (XIIIb) suivante : - N1 - N2- ...- Nn_1- Nn - -[M1 - M2 Mm-1 )3'" (XIIIb) dans laquelle, N1, ...Nn représentent indépendamment les uns des autres un nucléotide, M1, ... Mn, représentent indépendamment les uns des autres un nucléotide, (Tc') représente le composé obtenu à partir de (Ic) par coupure de la liaison ester avec le support solide E (I') représente un composé de formule (I'a) ou (I'b), n est un nombre entier compris entre 1 et 100, m est un nombre entier compris entre 1 et 100, y est un nombre entier compris entre 1 et 12, y' est un nombre entier compris entre 0 et 12, p vaut 0 ou 1 si y' est différent de 0 et, si y' vaut 0 alors p vaut 0, y" est un nombre entier compris entre 0 et 12 si p vaut 1 et, si p vaut 0 alors y" vaut O. Le retrait du support s'effectue par un procédé classique connu de l'homme du métier, de préférence par un traitement du composé (XIIIa) avec de l'hydroxyde d'ammonium (NH40H). Un autre objet de la présente invention concerne les oligonucléotides modifiés (XIIc) et (XIIIc) obtenus respectivement à partir des composés (XIIa) et (XIIIa) par déprotection de la fonction thiol et coupure de la liaison reliant le composé au support solide (Figures 3 et 4 respectivement). Dans le cas où l'oligonucléotide est modifié par un ou plusieurs composés thiol de type (Ia), après déprotection de la fonction thiol et de la fonction phosphoramidite du composé (XIIa) par un traitement connu de l'homme du métier, le composé de formule (XIIc) est obtenu : N1 - N2- ...- Nn_1- Nn- (I")y -(M1 - Mrn_1- Mrn)p - (I")y, (XIIc) dans laquelle, N1, ...Nn représentent indépendamment les uns des autres un nucléotide, M1, ...Mn, représentent indépendamment les uns des autres un nucléotide, HS f 0 0-X' 'y-O. IO n est un nombre entier compris entre 1 et 100, (I") = m est un nombre entier compris entre 1 et 100, y est un nombre entier compris entre 1 et 12, p représente 0 ou 1, y' est un nombre entier compris entre 0 et 12 si p vaut 1 et, y' est égal à 0 si p vaut 0. ou en formule développée dans le cas où p=0 : HS, Z 0 O-X,WY-O,P- O- (XII H (XIIc) C) dans laquelle, X, Y, W, Z ont la même définition que pour le composé (I), N1, ...N, n, y ont la même définition que pour le composé (XIIa), Bn représente une base classiquement utilisée dans une chaîne nucléotidique. Dans le cas où l'oligonucléotide est modifié par un ou plusieurs composés thiol de type (lb), après déprotection de la fonction thiol du composé (XIIIa) par un traitement connu de l'homme du métier, le composé de formule (XIIIc) est obtenu : - N1 - N2- ... - - ')37' -[M1 - M2 Mm-1- Mmb-(ny (XIIIc) dans laquelle, N1, ...N. représentent indépendamment les uns des autres un nucléotide, M1, ... M' représentent indépendamment les uns des autres un nucléotide, (Ic') représente le composé obtenu à partir de (Ic) par coupure de la liaison ester avec le support solide E, HS 0 \A/ ,P- `(-0 II _ 0 n est un nombre entier compris entre 1 et 100, (I'') = m est un nombre entier compris entre 1 et 100, y est un nombre entier compris entre 1 et 12, y' est un nombre entier compris entre 0 et 12, p vaut 0 ou 1 si y' est différent de 0 et, si y' vaut 0 alors p vaut 0, y" est un nombre entier compris entre 0 et 12 si p vaut 1 et, si p vaut 0 alors y" vaut 0. ou en formule développée dans le cas où y' = p = 0 : Ni, 13 2 O-P=0 HS (XIIIc) \ HS 1-10-Y,wX 0 0 \ Il P 0 Y-W-X 0 Il dans laquelle, _ P _ o X, Y, W, Z ont la même définition que pour le composé (I), N2, ...N, n et y ont la même définition que pour le composé (XIIa), Bn correspond à une base classiquement utilisée dans une chaîne nucléotidique. Lors de la synthèse de l'oligonucléotide, la fonction thiol est de préférence protégée. En effet, la fonction thiol peut réagir avec la fonction phosphoramidite entrante. Selon un mode de réalisation, l'étape de déprotection des fonctions thiol et d'élimination du support solide s'effectue en une seule étape de traitement de l'oligonucléotide modifié (XIIa) ou (XIIIa) Selon un mode de réalisation, l'élimination du support solide s'effectue dans une première étape puis la déprotection des fonctions thiol s'effectue dans une seconde étape. L'oligonucléotide final (XIIc) (respectivement l'oligonucléotide final (XIIIc)) est obtenu indépendamment du composé thiol de départ, que ce soit à partir du composé (Ia) ou du composé (lb). En effet, quel que soit le monomère (Ia) ou (lb) utilisé, l'unité monomère thiol résultant de la réaction d'oligomérisation correspond au composé (I") décrit précédemment. Les supports greffés de formules (XVI)k selon l'invention permettent d'amorcer la synthèse d'oligonucléotides. On peut notamment prévoir de préparer de façon industrielle ou semi-industrielle des supports solides greffés par des séquences d'oligomères qui seront employées comme séquence polythiol en position 3' d'un oligonucléotide. Kit de synthèse Un tel support solide greffé par un premier oligomère (Ic) - (I')k peut avantageusement être utilisé dans un kit de synthèse d'oligonucléotides modifiés. Dans un tel kit, il peut être associé avec un support comportant des zones de réception telles que les puits d'une plaque multi-puits dans lesquels des réactions de synthèse sont faites par des méthodes telles que celles qui sont connues pour la réalisation des réactions d' oligomérisation de nucléotides. Dispositif automatisé Un tel kit peut être utilisé dans un dispositif automatisé pour la synthèse d'oligonucléotides. Dans ce cas, un tel dispositif comporte au moins - des réservoirs distincts contenant : - des nucléotides, - des activateurs de couplage et - des produits de lavage, - des moyens mécaniques de prélèvement et de distribution d'échantillons de produits, ainsi que des moyens informatiques permettant la mise en oeuvre contrôlée de ces moyens mécaniques, ainsi que : - au moins un réservoir dans lequel est placé un support solide greffé par un oligomère (XVI)k des composés (I) tels que décrit ci-dessus, et/ou au moins un réservoir contenant un composé (Ia) ou un composé (lb). Un tel automate comporte également des moyens mécaniques de prélèvement d'échantillons dans les différents réservoirs et des moyens de distribution de ces échantillons dans le réservoir comportant le support solide. De tels moyens peuvent consister en un ensemble de tuyaux de circulation de fluides et valves, arrangés éventuellement en circuits microfluidiques, ou en des bras articulés équipés de pipettes de prélèvement. Le dispositif automatisé comporte aussi des moyens informatiques (logiciels) permettant la mise en oeuvre contrôlée de ces moyens mécaniques, permettant la mise en oeuvre de réactions séquencées. Fonctionnalisation de surface Les oligonucléotides modifiés selon l'invention peuvent être déposés sur un substrat afin de fonctionnaliser la surface de ce substrat. Le substrat peut être métallique ou bien en polymère. Selon un mode de réalisation, le substrat est métallique, par exemple en cuivre ou en titane, et est recouvert partiellement ou sur toute sa surface d'un film d'or ou de platine, de préférence d'or. Selon un autre mode de réalisation, le substrat en polymère, par exemple en polystyrène, est greffé par des fonctions alcényles ou alcynyles ou bromoacétamides ou iodoacétamides. Selon un mode de réalisation, le substrat en polymère est un polymère conducteur. Selon un mode de réalisation, les fonctions alcényles ou alcynyles sont activées par une fonction carbonyle en alpha, de préférence les fonctions alcényles ou alcynyles sont choisies parmi les groupements maléimide, acrylamide, iodoacétamido ou bromoacétamido, 2-propynamide ou N-alkyl-2-propynamide. Par exemple le substrat peut comporter des zones de réception recouvertes d'un film d'or ou de platine ou recouvertes de fonctions alcényles ou alcynyles, telles que des fonctions maléimide ou acrylamide sur lesquelles l'oligonucléotide modifié est déposé. Comme illustré sur la figure 13a, dans laquelle le composé gpt - SH représente l'oligonucléotide modifié (XIIc) ou l'oligonucléotide modifié (XIIIc) selon l'invention, la fonction thiol réagit avec la double liaison carbone-carbone ou la triple liaison carbone-carbone activée par une fonction carbonyle en alpha. Du haut vers le bas de la figure 13a, la première réaction de fonctionnalisation correspond à une surface greffée maléimide, la seconde réaction correspond à une surface greffée acrylamide, la troisième réaction correspond à une surface greffée iodoacétamido ou bromoacétamido et la quatrième réaction correspond à une surface greffée 2- propynamide effectuée dans le cas d'un oligonucléotide (XIIc) ou (XIIIc) modifié par deux composés thiols selon l'invention. Dans le cas de la figure 13b, la surface est greffée par des groupements alcényles (1 ère réaction) et alcynyles (2nde réaction) non activés. La réaction entre la fonction thiol de l'oligonucléotide modifié (XIIc) ou (XIIIc) s'effectue à l'aide d'une activation lumineuse (X, = 265 nm). La première réaction de fonctionnalisation est effectuée à l'aide d'un oligonucléotide modifié monothiol schématiquement représenté par gpt - SH et la seconde réaction est effectuée à l'aide d'un oligonucléotide modifié dithiol. Dans le cas ou le support est greffé par des fonctions alcynyles, la fonctionnalisation de surface par un oligonucléotide modifié polythiol est très intéressante car elle conduit à une structure cyclique grâce à deux réactions successives entre une première fonction thiol et la fonction -yne dans une première étape puis entre une deuxième fonction thiol et la fonction -ène résultante dans une seconde étape (figures 13a et 13b). Selon un mode de réalisation préféré, le substrat est greffé par des groupements maléimide ou acrylamide. Ainsi, l'invention permet par exemple de fonctionnaliser une surface d'or par création de liaison(s) or-soufre entre la surface du substrat et l'oligonucléotide modifié ou bien de fonctionnaliser une surface greffée par des fonctions maléimide ou acrylamide par création de liaison(s) thioéther. La fixation des oligonucléotides modifiés à la surface du substrat s'effectue par contact de la surface à traiter avec une solution comprenant l'oligonucléotide modifié, tel que ceux représentés par les formules (XIIc) et (XIIIc) On prévoit généralement ultérieurement une ou plusieurs étapes de lavage et de séchage. En général, la solution d'oligonucléotides modifiés est à une concentration comprise entre 0,101.1M et 500 1.1M, de préférence entre 0,50 1.1M et 100 1.1M pour la surface d'or et entre 50 et 200 nM, de préférence entre 75 nM et 150 nM pour le maléimide ou l'acrylamide suivi d'un lavage pour éliminer ce qui n'a pas réagi. La présence de plusieurs atomes de soufre sur l'oligonucléotide permet de créer plusieurs liaisons or-soufre, ou plusieurs liaisons thioéthers, ce qui permet de stabiliser l'oligonucléotide sur la surface. Selon un mode de réalisation, le substrat est non planaire, par exemple sous forme de microparticules ou nanoparticules. Les oligonucléotides modifiés selon l'invention peuvent alors être greffés sur ces microparticules ou nanoparticules. De préférence, ces particules sont magnétiques. En effet, ces particules magnétiques peuvent alors être facilement amenées à la surface d'une électrode ou au fond des puits d'une microplaque, en vue d'un test de détection, par application d'un aimant. Fixation à des marqueurs ou ligands Les oligomères de la présente invention peuvent également être utilisés afin de lier par un ou plusieurs points d'attachement des marqueurs ou des ligands à des molécules ou des polymères. Les marqueurs ou ligands peuvent être par exemples, des marqueurs enzymatiques, chromogènes, fluorogènes, radioactifs, ou chemiluminescents, des métaux, des ions métalliques, des hormones, des protéines, des peptides, des saccharides, oligosaccharides, des agents nucléolytiques ou protéolytiques, des agents de liaison, tels que une biotine, un antigène, un haptène, un anticorps ou un récepteur. Les marqueurs ou ligands peuvent être tous des composés d'intérêt biologique qui peuvent influencer le transport d'oligonucléotides à travers des membranes biologiques et/ou qui peuvent modifier la solubilité des oligonucléotides. Kits de test Un autre objet de l'invention consiste en un kit de test et/ou de diagnostic comportant au moins un support comportant au moins une zone de réception, sur laquelle est placé au moins un oligonucléotide modifié selon l'invention. Ainsi, le kit de test peut être utilisé pour le criblage de molécules biologiquement actives ou pour des tests de diagnostic ou séquençage. On peut prévoir que le kit de diagnostic comporte plusieurs zones de réception distinctes, sur lesquelles un support solide greffé par des oligonucléotides identiques ou distincts est déposé. Par exemple, des supports solides greffés par des oligonucléotides identiques ou distincts peuvent être placés sur des zones de réception distinctes d'un substrat recouvert d'un film d'or ou d'un substrat greffé par des fonctions comportant au moins une double liaison carbone-carbone ou une triple liaison carbone-carbone ou des fonctions halogénoacétamide, de préférence des fonctions maléimide ou acrylamide de façon à former un support de test et/ou de diagnostic. Le support peut notamment être une électrode d'or. Le kit de test peut comprendre une cellule électrochimique comportant une électrode de travail, une contre électrode et une électrode de référence. L'électrode de travail peut être en or et la contre électrode en platine et l'électrode de référence en argent. L'étude de l'interaction d'un oligonucléotide modifié avec une molécule à tester peut comporter une étape de voltampérométrie cyclique. Le greffage avec des fonctions alcényle, alcynyle ou halogénoacétamide, telles que maléimide ou acrylamide, peut par exemple être utilisé pour des applications dans le domaine du diagnostic en format microplaque et/ou pour la mise en oeuvre de tests de type ELOSA (« Enzyme-Linked OligoSorbent Assay » en anglais ou « dosage d'oligoadsorption par enzyme liée » en français). Au cours de ce type de test, la surface des puits est greffée par des fonctions alcényle, alcynyle ou halogénoacétamide, telle que des fonctions maléimide ou acrylamide. Puis, la surface est mise en contact avec des oligonucléotides modifiés selon l'invention. Ainsi, une ou plusieurs liaisons thioéther se forment grâce à la présence d'un ou plusieurs composés thiol selon l'invention sur les oligonucléotides. Puis, le test consiste à mettre en contact un échantillon à tester avec les puits ainsi fonctionnalisés, pour notamment mesurer l'hybridation des oligonucléotides. La mesure peut par exemple se faire par fluorescence grâce à un marquage des chaînes d'oligonucléotides. L'invention concerne également l'utilisation d'un composé comportant au moins deux fonctions thiol pour le greffage sur surface fonctionnalisée, notamment fonctionnalisée par du maléimide ou acrylamide, d'un oligonucléotide. Selon un mode de réalisation, le composé peut comporter trois ou quatre fonctions thiol. L'oligonucléotide immobilisé sur la surface maléimide ou acrylamide par l'intermédiaire du composé comprenant au moins deux fonctions thiol présente une très bonne stabilité pour une utilisation dans un test diagnostic, tel qu'un test de type ELOSA, ainsi qu'une meilleure disponibilité vis-à-vis des cibles. Lorsque le nombre de fonctions thiol dans le composé augmente, le nombre d'hybridations sur l'ensemble du support greffé lors du test de détection augmente. Ainsi, un oligomère présentant quatre fonctions thiol permet une hybridation de la cible plus efficace. En effet, après avoir réagi avec l' oligonucléotide, il permet d'obtenir d'excellents résultats au test de détection de type ELOSA. EXEMPLES Dans les exemples, on entend par « sonde », une chaîne d'oligonucléotides comprenant au moins un composé thiol selon l'invention destinée à être immobilisée sur une surface. On entend par « cible », une chaîne d'oligonucléotides destinée à s'hybrider avec la sonde, par exemple, lors d'un test de diagnostic. Synthèse du composé 1-0-(4,4'-diméthoxytrity1)-2-(6-S-acétylthiohexyloxyméthyl)- 2-méthylpropane-1,3-diol 4 OH OH HO OH DMTrO OH DMTrO OH 1 2 3 AcS-K+ AcS---ÇCH2)6 DMTrOOH DMTr - CI Br---ÇCH2)6 Br - (CH2)6 - Br 0 Le composé 3 est obtenu à partir du composé 1 en suivant le protocole décrit dans Pourceau, G., Meyer, A., Vasseur, J. J., and Morvan, F., Journal of Organic Chemistry 74, 2009, 1218-1222. A une solution de 1-0-(4,4'-diméthoxytrity1)-2-(6-bromohexyloxyméthyl)-2- méthyl-1,3-propanediol 3, (556 mg, 0,95 mmol) et de thioacétate de potassium (162 mg, 1,42 mmol) dans du toluène anhydre (10 mL) on ajoute de l'éther couronne 18-6 (70 mg, 0,26 mmol). Le mélange est agité magnétiquement 2 heures à 50 °C. Après dilution avec du dichlorométhane (150 mL) le mélange est filtré et la phase organique lavée avec de l'eau (2 x 50 mL) puis séchée sur Na2SO4. Après évaporation, le brut de réaction est purifié par chromatographie sur silice (0 à 30% d'acétate d'éthyle dans le cyclohexane) pour conduire au produit désiré sous forme d'une huile incolore (413 mg, 75%). Synthèse du 1-0-(4,4'-diméthoxytrity1)-2-(6-S-acétylthiohexyloxyméthyl)-2-méthyl- 3-0-(2-cyanoéthyl-N,N'-diisopropylphosphoramidite)-propane-1,3-diol 5 AcS----.ÇCH2)6 0 DMTrO iPr AcS----(\CH2)6 iPr 0 DMTrO 0 0 OH 4 5 CN A une solution de 1-0-(4,4'-diméthoxytrity1)-2-(6-S-acétylthiohexyloxyméthyl)- 2-méthylpropane-1,3-diol 4 (413 mg, 0,71 mmol) et de diisopropyléthylamine (186 1.1.1,' 1,06 mmol) dans le dichlorométhane anhydre (10 mL) est ajouté du 2-cyanoéthyl- N,N'-diisopropylchlorophosphoramidite (190 1.1.1,' 0,85 mmol). Le mélange est agité magnétiquement une heure à température ambiante. L'excès de réactif est neutralisé par addition de 500 !IL d'eau puis le mélange est dilué avec du dichlorométhane (150 mL). La phase organique est lavée avec une solution aqueuse saturée en NaHCO3 (100 mL), puis séchée sur Na2SO4. Après évaporation, le brut est purifié par chromatographie sur silice (0 à 30% d'acétate d'éthyle dans du cyclohexane contenant 4% de triéthylamine) conduisant au composé 5 désiré sous forme d'une huile incolore (400 mg, 72%). Synthèse du support solide thiol 6 O 41 NH H2)6 DMTrO O oNH O OH HO O 4 6 Dans un tube rodé, le 1-044,4 '-dim éthoxytrity1)-2-(6- S- acétylthiohexyloxyméthyl)-2-méthy1-1,3-propanediol 4 (178 mg, 0,3 mmol) et la dimethylaminopyridine (DMAP 36 mg, 0,3 mmol) sont coévaporés avec 3 mL de pyridine anhydre. Puis on ajoute la succinyl-longue chaine alkylamine -CPG (Controled Pore Glass) (1 g), la pyridine anhydre (5 mL), la triéthylamine anhydre (160mL, 1,2 mmol) et l'éthyldiméthylaminopropyl carbodiimide (EDC, 280 mg, 2,0 mmol). Puis on rince avec 1 mL de pyridine anhydre. Le mélange est agité une nuit. Le mélange est filtré et lavé avec CH2C12 (10 mL) puis séché au dessiccateur. Le composé thiol sur support solide est traité par une solution d'anhydride acétique, N- méthylimidazole, 2,6-lutidine dans le THF pendant 3h sous agitation. Le mélange est filtré et lavé avec CH2C12 (10 mL) puis séché au dessiccateur pour donner le support solide thiol 6 (940 mg) avec une fonctionnalisation de 29 mol/g. Préparation d' oligonucléotides modifiés Trois oligonucléotides comprenant un groupement ferrocène en position 5' et un nombre croissant de composés thiol de type (Ia) selon l'invention (1, 2 et 4 composés thiol) ont été synthétisés sur un synthétiseur d'ADN. Le groupement ferrocène a été utilisé afin de visualiser l'immobilisation de l'oligonucléotide sur la surface d'or par voltampérométrie cyclique. Un, deux ou quatre groupements thiols ont été introduits sur un support solide de type propanediol et la séquence ADN SEQ ID NO : 3 a été greffée. Enfin, une phosphoramidite alpha-thymidine portant un groupement ferrocène a été introduite en position 5' de l'oligonucléotide modifié. La déprotection qui suit s'effectue en deux étapes. D'abord, le milieu est traité avec 10% de pipéridine dans l'acétonitrile pendant 10 minutes afin d'éliminer le groupement cyanoéthyle par une bêta-élimination et l'acrylonitrile résultant est éliminé du milieu par un lavage à l'acétonitrile. Puis, un traitement à l'hydroxyde d'ammonium concentré permet d'éliminer les groupements protecteurs acyles sur les nucléobases et sur les fonctions thiol et permet d'hydrolyser le bras de liaison succinyle (support solide). Ce protocole permet d'éviter l'addition de Michael entre les fonctions thiol déprotégées et l'acrilonitrile. Après évaporation, l'oligonucléotide modifié non supporté est purifié par chromatographie HPLC en phase inverse sur colonne C18. Tétrathiol (oligonucléotide modifié par 4 composés thiol) T O 0 HO CCA AGC ACG ATG 0 HO O 0 0___v °_ \ 0 HO 0 HO 0 OH HS HS HS Dithiol (oligonucléotide modifié par 2 composés thiol) T O 0 HO CCA AGC ACG ATG T Pi; 0 HO -1\--0- \ 0 HO OH SH SH 10 Monothiol (oligonucléotide modifié par 1 composé thiol) aT HO CCA AGC ACG ATGT O HS Greffage et étude de stabilité des oligonucléotides modifiés (tétrathiol, dithiol et 15 monothiol) Pour cette étude, un potentiostat multivoies VMP3 Biologic (Biologic Science Instruments, Pont de Claix) a été utilisé. Les résultats ont été enregistrés à l'aide du logiciel EC-Lab de Biologic Science Instruments. La cellule électrochimique est composée d'une électrode d'or de 0,28cm2 de 20 surface, d'une contre électrode en platine et d'une électrode de référence Ag/AgCl. Etape 1 : Réduction des groupements thiols 4nmol d'ODN-thiol (oligonucléotides modifiés avec un ou plusieurs composés thiol) sont réduits dans une solution de Tris(2-carboxyethyl)phosphine hydrochlorure 25 (TCEP, HCL, Sigma-Aldrich) (160mM) soit une concentration dans la solution de 20mM en TCEP,HC1, à 20°C, pendant 2h sous argon. L'ODN est purifié par deux dilutions/centrifugations successives avec une solution de TCEP, HC1 20mM dégazée sur filtres amicon YM3000 (millipore) 15min à 14000rcf (rcf = Relative Centrifugal Force). Après dilution dans 4501.it de tampon HS O o o HO o OH phosphate 100mM dégazé, le milieu est de nouveau centrifugé sur filtres amicon YM3000, 30 min, 14000rcf. Une solution de greffage contenant 4nmol d'ODN, 90mM en phosphate de sodium, 2mM en TCEP, HC1 est obtenue. Etape 2 : Activation de l'électrode d'or L'électrode de travail d'or est nettoyée par un premier lavage dans l'acétone pendant 10 minutes aux ultra-sons. Une fois séchée la surface est plongée dans une solution « piranha » (H2SO4 0,7mL, H202 0,3mL) pendant 1 minute afin d'éliminer tout résidu organique de la surface. Enfin l'activation basique de l'électrode consiste à nettoyer l'or en surface par production d'hydrogène à l'électrode par hydrolyse de l'eau dans la soude 0,5M dans les potentiels négatifs (-1,4V vs Ag/AgC1) pendant plusieurs cycles. Etape 3 : Greffage de la sonde Après rinçage, la solution de greffage contenant l'oligonucléotide thiol est mise au contact de l'électrode d'or activée, pendant trois jours sous atmosphère inerte. Après rinçage, la cellule électrochimique est remplie avec l'électrolyte d'analyse (phosphate de sodium dibasique 10mM, phosphate de potassium monobasique 10mM, perchlorate de sodium 250mM, pH 6,5). La surface est passivée par une solution de mercaptopropanol 1mM pendant 30 minutes, après rinçage la cellule est mise dans l'électrolyte d'analyse pendant 2h afin de stabiliser la couche greffée. Etape 4 : Analyse de la stabilité des composés greffés en surface Les analyses sont réalisées par voltampérométrie cyclique (CV) à 50mV/s ; entre -0,1V et 0,45V. Les études de stabilité de la couche greffée sont réalisées après une stabilisation du signal électrochimique pendant 2h en cyclant toutes les 30 minutes. La cellule est remplie d'eau distillée dégazée à 60°C ou 80°C pendant 1 ou 5 minutes, après rinçage la cellule est remplie de 1,5mL d'électrolyte d'analyse phosphate (20mM) perchlorate (250mM). Après 30 minutes de stabilisation une CV est réalisée. L'opération est renouvelée autant que nécessaire.35 Résultats Une comparaison du taux de greffage des 3 oligonucléotides modifiés par des composés thiol (tétrathiol, dithiol et monothiol) a été réalisée. Le taux de greffage a été déterminé par intégration du pic d'oxydation du ferrocène. En effet, la charge d'électron transférée est directement liée au nombre de ferrocènes présents en surface de l'électrode, et donc au nombre de sondes greffées sur l'or. Les résultats ci-dessous correspondent à la moyenne des taux de greffage de 3 greffages différents pour chaque sonde. molécules/cm2 monothiol dithiol 5,21E+12 5,81E+12 tétrathiol 1,40E+12 Un histogramme des résultats est représenté sur la figure 5. Les taux de greffages pour le monothiol et dithiol sont assez comparables, nous pouvons observer un greffage moins important du tétrathiol probablement dû à l'encombrement plus important en accord avec le nombre de bras thiols. Malgré cette différence, le taux de greffage du tétrathiol reste important et il est très reproductible. Une étude de stabilité des 3 oligonucléotides modifiés par des composés thiol 20 vis-à-vis de la température a été menée dans de l'eau distillée dégazée. L'évolution de la réponse électrochimique a été suivie par voltampérométrie cyclique. Le pourcentage de diminution d'intensité d'oxydation du Ferrocène est calculé par rapport au signal obtenu après stabilisation. Ces diminutions en fonction du temps sont reportées sur les figures 6 et 7. 25 La molécule tétrathiol est très stable vis-à-vis de traitements successifs dans de l'eau à 60°C (figure 6). En effet, après 5 fois une minute de ce traitement, il reste 97% du signal de départ, contrairement au monothiol (70% de signal de départ) et dithiol (62%de signal de départ). A 80°C, la perte de signal est plus importante (figure 7). Après cinq traitements 30 successifs de une minute, 83% du signal de départ est encore quantifiable pour le tétrathiol. Ainsi, la stabilité du tétrathiol est bien supérieure à celle du monothiol (45% de signal résiduel) et celle du dithiol (18% de signal résiduel). Cette étude montre le gain notable de stabilité du greffage thiol sur or par 35 l'emploi d'un oligonucléotide modifié par 4 composés thiol (tétrathiol), en comparaison du greffage d'un monothiol ou d'un dithiol. Le manque de stabilité de ce dernier dithiol peut s'expliquer par une possible compétition entre le greffage sur or et la fermeture du cycle pour reformer le pont disulfure intramoléculaire. Il apparaît donc préférable de maintenir un nombre de quatre thiols sur le bras de greffage pour assurer une bonne stabilité vis-à-vis de la température. Application : détection de la présence du Virus de l'Hépatite C Echantillons cibles à tester 1) Cibles naturelles : amplicons VHC (+) Prélèvement : les échantillons de plasmas issus de donneurs de sang dépistés positifs pour la présence du Virus de l'Hépatite C (VHC) à l'échelle nationale sont analysés par séquençage. Amplification de l'ARN viral : Des amplicons VHC de 401pb sont produits dans la région virale NS5b par RT-PCR à partir des échantillons de plasmas décrits précédemment. L'ARN est extrait à partir de 2001.1L de plasma humain en utilisant le kit High Pure Viral Nucleic Acid (Roche) selon les recommandations du fabriquant. L'ARN est élue dans 501.11_, d'eau stérile (DNase/RNase free). Afin d'effectuer l'étape de rétro-transcription (RT), 111.11_, d'ARN sont dénaturés à 72°C pendant 10 minutes et rétro-transcrits en présence de 41.1L de 5X First Strand Buffer (Invitrogen), 21.11_, de 10X Hexanucleotide Mix (Roche), 21.11_, de 10mM dNTP mix (Invitrogen) et 200U de SuperScript® II Reverse Transcriptase (Invitrogen). Les conditions de rétro- transcription sont les suivantes : 10 min à 23°C, 45 min à 37°C, et 10 min à 95°C. Cinq microlitres d'ADNc sont ensuite amplifiés par PCR (réaction en chaîne par polymérase) en utilisant les amorces « VHCsens biotinylée » (SEQ ID NO : 1 [Btn] Tgg ggA TCC CgT Atg ATA CCC gCT gCT TTg A) et « VHCanti-sens » (SEQ ID NO : 2 ggC ggA ATT CCT ggT CAT AgC CTC CgT gAA) (voir Catherine Tamalet, Philippe Colson, Hervé Tissot-Dupont, Mireille Henry, Christian Tourres, Natacha Tivoli, Danielle Botta, Isabelle Ravaux, Isabelle Poizot-Martin and Nouara Yahi. 2003, Journal of Medical Virology 71:391-398) dans 501.1L de mélange réactionnel : 1X PCR Buffer sans MgC12 (Invitrogen), 0,21.1M de chaque amorce, 1,5mM MgC12 (Invitrogen), 0,2mM dNTP mix (Invitrogen) et 1,3U Taq Polymerase (Invitrogen). Les conditions de PCR sont les suivantes : 5 min à 95°C, 40 cycles (dénaturation: 40 sec, 95°C; hybridation: 40 sec, 56°C; élongation: 50 sec, 72°C), et une extension finale de 10 min à 72°C. Les amplicons VHC obtenus sont analysés par électrophorèse en gel d'agarose, aliquotes et conservés à -20°C avant utilisation.35 2) Cibles synthétiques : oligonucléotides biotinylés Des oligonucléotides de 15-mères biotinylés à l'extrémité 5' ont été synthétisés. Ces oligonucléotides sont strictement complémentaires aux sondes VHC choisies comme suit. Design des sondes oligonucléotidiques pour la reconnaissance de séquences VHC. La région NS5b du VHC a été ciblée pour le design des sondes oligonucléotidiques. Les séquences des génomes VHC amplifiés dans la région NS5b (banque de 800 échantillons) ont été analysées à l'aide des logiciels d'alignement clustalW2 et de phylogénie Mega5 afin d'identifier les zones les plus conservées. Une région très conservée permettant l'amplification spécifique de tous les génomes de génotype viral lalb a été sélectionnée ainsi qu'une seconde région permettant l'amplification spécifique des génomes de génotype viral 3a. Deux sondes de 15-mères ont été dessinées complémentaires de chacune de ces régions. Le design des sondes lalb et 3a est alors utilisé pour la synthèse des oligonucléotides multi-thiols. Evaluation des hybridations sondes / cibles par ELOSA (Enzyme-Linked OligoSorbent Assay) Le greffage de tout type de sondes thiols (oligonucléotides d'anomérie alpha ou béta, sondes linéaires ou structurées (par exemple tige-boucle) peut être réalisé selon ce protocole optimisé après lavage des puits de microplaques activées maléimide (Pierce) par le tampon WB1 (0,1M Na2HPO4, 0,15M NaC1, 0,05% Tween 20 (w/v), pH 7,2). La fonctionnalisation des puits est réalisée avec 100nM de sondes multi- thiols dans du tampon BB (0,1M Na2HPO4, 0,15M NaC1, 10mM EDTA, pH 7,2) pendant 2 heures à température ambiante (TA). Les puits sont ensuite lavés trois fois avec WB1, saturés par une solution de Cystéine-HC1 10 lag.mL-1 dans BB (Pierce) pendant 1 heure à TA, et lavés à nouveau trois fois avec WB1. Les tests d'hybridation peuvent être réalisés avec les cibles synthétiques courtes 15-mères ou avec de réels amplicons VHC longs (401 nucléotides) décrits plus haut. Les cibles synthétiques et les amplicons sont dilués dans 150 !IL de tampon d'hybridation (TH : 0,9M NaC1, 60mM NaH2PO4, 6mM EDTA, pH 7,4, Denhardt 5X) avant d'être déposés dans les puits. Une étape supplémentaire de dénaturation de 10 min à 95°C est effectuée sur les amplicons avant transfert dans les micropuits. L'hybridation est réalisée sur la nuit à 37°C. Les puits sont lavés avec du tampon WB2 (0,75M NaC1, 50mM NaH2PO4, 5mM EDTA, pH 7,4, SDS 0,1 %) trois fois 2 min à TA et une fois 30 min à 50°C. L'étape de détection est réalisée après incubation pendant 30 min à TA des puits en présence de 100 1.1L/puits de Streptavidine-Europium diluée dans 100 1.1L de tampon de test (« Assay Buffer », Perkin Elmer). Les puits sont finalement lavés six fois avec du tampon WB3 (WB1X, Perkin Elmer) et 200 1.1L de tampon d'amplification (« Enhancement Buffer », Perkin Elmer) sont ajoutés dans chaque puits pendant 5 min à TA. La fluorescence en temps résolu est mesurée sur un détecteur multi-marquage Victor3TM 1420 (« multilabel counter », Perkin Elmer) selon le protocole du fabricant (excitation à 340 nm et émission à 615 nm). Le test ELOSA est réalisé avec des amplicons spécifiques du génotype VHC 3a (dilutions 1/10, 1/100 et 1/1000) et des amplicons spécifiques du génotype VHC lalb (et donc non spécifiques du génotype 3a). Le contrôle d'hybridation est effectué avec des cibles synthétiques (15-mères) spécifiques du génotype 3a (complémentaire de la sonde), testées à 1000 pM et 5 pM et des cibles synthétiques spécifiques du génotype lalb, testées à 1000 pM. Le graphique de la figure 8, correspondant au test de fluorescence, illustre les résultats du test ELOSA et quantifie l'hybridation avec la sonde tétrathiol correspondant au génotype VHC 3a. Les tests « contrôle lalb » correspondent au bruit de fond ; les résultats « spécifiques 3a » doivent donc dépasser le bruit de fond pour que le test permette de quantifier l'hybridation. Etude de l'effet de la densité de greffage Le même test ELOSA est effectué en modifiant la concentration de la solution de sondes (monothiol, dithiol et tétrathiol) pour la faire varier de 1 nM à 100 nM. Le test ELOSA est effectué avec des cibles lalb et 3a à courtes chaînes (15-mères) et à chaînes moyennes (105-mères). Les tests effectués avec les sondes spécifiques du génotype lalb montrent une très bonne spécificité d'hybridation avec les cibles spécifique lalb et aucune hybridation avec des cibles non complémentaires de génotype 3a. La détection de l'hybridation sonde/cible s'effectue par fluorescence comme précédemment (figure 8). Les résultats pour chaque type de sondes (monothiol, dithiol et tétrathiol) sont représentés sur les graphiques des figures 9, 10 et 11. Le contrôle TH correspond à un test effectué dans les puits mais sans la présence des sondes. La figure 9 illustre les résultats obtenus pour la sonde monothiol, c'est-à-dire comprenant un seul composé thiol selon l'invention. La sonde monothiol n'est pas efficace pour la détection de cible 105-mères, le signal pour les cibles 105-mères étant identique au signal de contrôle TH. Par ailleurs, la figure 9 montre également que la concentration de sonde utilisée pour le greffage entre 10 nM et 100 nM n'a aucun effet sur l'efficacité de l'hybridation, en effet, il n'y a pas de différence significative entre le test effectué avec 10 nM de sondes et celui effectué avec 100 nM de sondes. Par contre l'utilisation d'une concentration de 1 nM en sonde amène une baisse de l'efficacité de l'hybridation. La figure 10 illustre les résultats obtenus pour la sonde dithiol, c'est-à-dire comprenant deux composés thiol selon l'invention. La sonde dithiol se révèle peu efficace pour la détection de cibles 105-mères, une détection de l'hybridation étant observée pour une concentration de cibles lalb de 1000 pM. Par ailleurs, la figure 10 montre que la densité de greffage influe légèrement sur la détection de l'hybridation. En effet, le signal de fluorescence est plus important lorsque la concentration de sondes passe de 1 nM à 100 nM avec peu de différence entre 25 nM et 100 nM. La figure 11 illustre les résultats obtenus pour la sonde tétrathiol, c'est-à-dire comprenant quatre composés thiol selon l'invention. La sonde tétrathiol se révèle très efficace pour la détection de cibles 105-mères, le signal de fluorescence est bien supérieur au signal de fluorescence du contrôle TH, en particulier pour une concentration de cibles de 100 pM et 1000 pM. Par ailleurs, la figure 11 montre que la densité de greffage influe sur la détection de l'hybridation pour les 105-mères. En effet, pour une même concentration de cibles, par exemple 1000 pM, le signal de fluorescence est plus important lorsque la concentration de sondes est de 100 nM, par rapport à une concentration de sondes de 1 nM. Cet effet, aussi nommé « dose dépendance » est très marqué pour la détection de cibles 105-mères. La figure 12 illustre les résultats d'un test d'hybridation mené avec la séquence permettant le génotypage la/lb de HCV. Le test est mené à trois concentrations en cible, 100 pM, lOpM et 1pM, avec des cibles synthétiques de 105 bases de longueur. Le contrôle négatif est mené avec la cible 3a non complémentaire. La sonde tétrathiol la/lb est greffée sur l'électrode de travail à surface or de la cellule électrochimique. La réaction de reconnaissance est suivie par voltamétrie à pulses différentiels. Les valeurs indiquées en ordonnée correspondent aux valeurs normalisées de variation de courant. Ce test par électrochimie est sensible et spécifique à une concentration en cible de 1pM. La variation de signal apparaît être plus forte que pour le test mené à 100pM. A plus forte concentration en cible, un effet d'adsorption non spécifique des cibles sur la surface de l'électrode réduit l'efficacité de la réaction de reconnaissance. La variation de signal du test mené à 100pM apparaît plus faible que celle observée pour le test à 1pM. Cette méthode électrochimique ne permet pas un suivi quantitatif de la réaction d'hybridation. Néanmoins, elle fournit une réponse oui/non spécifique d'une très grande sensibilité. REVENDICATIONS1. Composé répondant à la formule (I) suivante : T Y X- \Alf / D-0 Z / S R dans laquelle : T est un groupement choisi parmi -0-P(OR1)N(R2)2, -0-PH(0)0-, -0C(0)JC(0)NH-E, o R1 est choisi parmi les groupements 2-cyanoéthyle, 15 R' iR' 2R' 3 SiCH2CH2, et R'1, R'2, R'3 identiques ou différents représentent un groupement choisi parmi les alkyles linéaires ou ramifiés comportant de 1 à 12 atomes de carbone et les aryles en C6-C12, o R2 est choisi parmi les groupements alkyles linéaires ou ramifiés 20 comportant de 1 à 12 atomes de carbone, pyrrolidine, o J est choisi parmi une simple liaison, un groupement -CH2-, -CH2CH2-, -CH2OCH2-, -CH2OPhOCH2- où Ph est un benzyle, o E représente un support solide, D est un groupement protecteur des alcools, 25 W est choisi parmi les groupements alcanes tri-yles en C1-C12, Z est choisi parmi les groupements alkoxy en C1-C12, cyclohétéroalkyles oxygéné ou azoté en C3-C12, NCO-alkyles en C1-C12, CON-alkyles en C1-C12, Y est choisi parmi les groupements alkyles linéaires ou ramifiés en C1-C12, aminoalkyles en C1-C12, alkoxy en C1-C12, cycloalkyles en C3-C12, 30 cyclohétéroalkyles oxygénés ou azotés en C3-C12, X est choisi parmi les groupements alkyles linéaires ou ramifiés en C1-C12, aminoalkyles en C1-C12, alkoxy en C1-C12, cycloalkyles en C3-C12, cyclohétéroalkyles oxygénés ou azotés en C3-C12, R est choisi parmi les groupements acyles en C1-C12, S-alkyles en C1-C12, S- 35 aryles en C6-C12, S-2-pyridine, S-hétéroalkyles oxygénés ou azotés en C1-C12, S- cycloalkyles en C3-C12, S-cyclohétéroalkyles oxygénés ou azotés en C3-C12. 10 (I)2. Composé selon la revendication 1 répondant à l'une des formules (Ia), (Ib) et (Ic) ci-dessous : Y- 0-P(OR1)N(R2)2 X-W D-0 (Ia) R (lb) s O O 0 J N (Ic) I H /Y X-W D-O \ / 20 R 3. Composé selon la revendication 1 ou la revendication 2, dans lequel : - D est choisi parmi le 4,4'-diméthoxytrityle, le 9-phenylxanthen-9-yl ou le 25 Fluorenylmethyloxycarbonyl, - W est un groupement alcane tri-yle en C1-C6, de préférence un groupement choisi parmi CH, CCH3, CCH2CH3, cyclohexyle et benzyle ; et/ou - Z est choisi parmi les groupements alkoxy en C1-C6, cyclohétéroalkyles oxygéné ou azoté en C3-C6, NCO-alkyles en C1-C6, CON-alkyles en Cl- 30 C6 ; et/ou - Y est choisi parmi les groupements alkyles linéaires ou ramifiés en C1-C6, aminoalkyles en C1-C6, alkoxy en C1-C6, cycloalkyles en C3-C6, cyclohétéroalkyles oxygénés ou azotés en C3-C6 ; et/ou - X est choisi parmi les groupements alkyles linéaires ou ramifiés en C1-C6, 35 aminoalkyles en C1-C6, alkoxy en C1-C6, cycloalkyles en C3-C6, cyclohétéroalkyles oxygénés ou azotés en C3-C6 ; et/ou R15- R est choisi parmi les groupements acyles en C1-C6, S-alkyles en C1-C6, S-aryles en C6-C6, S-hétéroalkyles oxygénés ou azotés en C1-C6, Scycloalkyles en C3-C6, S-cyclohétéroalkyles oxygénés ou azotés en C3-C6, de préférence R est un acyle en C1-C6. 4. Composé selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, dans lequel le groupement T est un groupement -0-P(OR1)N(R2)2 où R2 est un groupement isopropyle et R1 est choisi parmi les groupements 2-cyanoéthyle, 2- (triméthylsily1)éthyle, 2-(triphénylsily1)éthyle, 2-(diphénylméthylsily1)éthyle. 5. Composé selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, dans lequel le groupement T est le groupement -0C(0)JC(0)NH-E où E est un support solide choisi parmi les résines, en particulier parmi les résines à base de polystyrène, polyacrylamide, polyéthylèneglycol, cellulose, polyéthylène, polyester, latex, polyamide, polydiméthylacrylamide, les polymères hydrophiles synthétiques ou naturels, les billes de verre, les gels de silice. 6. Procédé de fabrication d'un composé de formule (I) selon l'une quelconque des revendications 1 à 5 comprenant au moins une étape choisie parmi les étapes suivantes : - préparation du composé (Ia) à partir du composé (II) selon le schéma de synthèse suivant : HO /(0R1) CI-P y 0-P(OR1)N(R2)2 /Y \/Y /N-R2 X-\N X- \N R2 / \ / \ D-0 Z D-0 Z / / s s \R \R (la) ou selon le schéma de synthèse suivant :35 2 HO R2, ,(0R1) Y ,N-P \ /X-W\ R2 N-R2 / R2 D-0 Z / S \R y 0-P(ORi)N(R2)2 Y X-W / \ D-0 Z / S R (la) - préparation du composé (lb) à partir du composé (II) selon le schéma de synthèse suivant : HO OQ /YH-P 1-0 ' /X-VV\ \ OQ' D-0 Z / S \R 0 0- \ , 1=) / H T-0 /X-W\ D-0 Z / S \R (lb) 20 dans laquelle Q et Q' représentent, indépendamment l'un de l'autre, un groupement benzène substitué ou non, - préparation du composé (Ic) à partir du composé (II) selon le schéma de synthèse suivant : 25 O O O O 0 J N HOJ NE Y 1 H H X-W D-0/ \,z S \R (Ic) HO \Y X-V\l/ D-0/ \,z S 30 \R ou selon le schéma de synthèse suivant : 35O O 53 HO 0 J N \/Y X-W I H D-d \ /Y X-W (II) \R D-0 (Ic) J OH 0r 0 O O HOJ OH , /0 Y X-W D-O \ R D, X, Y, Z, W, R, E, R1 et R2 ayant la même définition dans chacune de ces étapes que dans les revendications 1 à 5. 7. Oligomère susceptible d'être obtenu par oligomérisation d'un composé (I) selon l'une des revendications 1 à 5, répondant à la formule (Ic) - (A)k (XVI)k dans laquelle : (Ic) a la même signification que dans les revendications 2 à 5, le groupement R du composé (Ic) peut en outre représenter H. k représente un entier compris entre 1 et 12, A représente (I'a) ou (I'b) où OR 0 P- 0 (I' a) = -0 X-W et s / R35o 0 P 0 X-W (I'b) = -o / R dans lesquelles, X, Y, W, Z, R, R1 ont la même définition que dans les revendications 1 à 5, R peut en outre représenter H. 8. Oligomère selon la revendication 7, répondant à la formule (XIV)k : R \ R" S S / / Z Z \ \ 0 --VV YV-X\ 1 1 \X 0/Y [ 01 k D p (XIV)k I I 0 H Y 111N J 0 ORi 0 0 dans laquelle, E, D, X, Y, W, Z, R et R1 ont la même définition que dans les revendications 1 à 4, R peut en outre représenter H et D peut en outre représenter H, k est un nombre entier compris entre 1 et 11. 9. Procédé de préparation d'un oligonucléotide modifié comprenant au moins : - une étape de greffage d'un composé (I) selon l'une quelconque des revendications 1 à 5 sur un oligonucléotide, ou - une étape de greffage d'un nucléotide sur un oligomère selon la revendication 7 ou la revendication 8. 10. Oligonucléotide modifié susceptible d'être obtenu par le procédé selon la revendication 9 répondant à la formule (XIIa) suivante : E - N1 - N2- ...- N._1- Nn (r)y -(Mi -...- 1\4.4- Mr.)p - (r)y, dans laquelle,N1, ...N. représentent indépendamment les uns des autres un nucléotide, M1, _M., représentent indépendamment les uns des autres un nucléotide, (I') représente un composé de formule (I'a) ou (I'b) tel que définis à la revendication 7, n est un nombre entier compris entre 1 et 100, m est un nombre entier compris entre 1 et 100, y est un nombre entier compris entre 1 et 12, p représente 0 ou 1, y' est un nombre entier compris entre 0 et 12 si p vaut 1 et, y' est égal à 0 si p vaut 0, E représente un support solide. 11. Oligonucléotide modifié susceptible d'être obtenu par le procédé selon la revendication 9 répondant à la formule (XIIIa) suivante : (Ic) - (r )3,-1 - Ni - N2- . . . - Nn_1- Nn - )3,' -[M1 - M2 Mm-1 MMV(I')Y" dans laquelle, N1, ...N. représentent indépendamment les uns des autres un nucléotide, M1, ... M., représentent indépendamment les uns des autres un nucléotide, (I') représente un composé de formule (I'a) ou (I'b) tel que définis à la revendication 7, n est un nombre entier compris entre 1 et 100, m est un nombre entier compris entre 1 et 100, y est un nombre entier compris entre 1 et 12, y' est un nombre entier compris entre 0 et 12, p vaut 0 ou 1 si y' est différent de 0 et, si y' vaut 0 alors p vaut 0, y" est un nombre entier compris entre 0 et 12 si p vaut 1 et, si p vaut 0 alors y" vaut O. 12. Oligonucléotide modifié selon la revendication 10 répondant à la formule (XIIc) :35 HS, 0 11) H 0- 0 =P-0- (XI I c) Nn-i N2 N1 dans laquelle, n, y, Ni, ont la même définition que dans la revendication 8, X, Y, Z, W ont la même définition que dans les revendications 1 à 4, Bn représente la base du n-ième nucléotide. 13. Oligonucléotide modifié selon la revendication 11 répondant à la formule (XIIIc) : Nn 1 3 2 O-P=0 HS \ HS Z 0 0 HO-YvvX Il 0 Y-vv-X II P 0 P-0 I_ I_ 0 y0 dans laquelle, n, y, N ont la même définition que dans la revendication 9, X, Y, Z, W ont la même définition que dans les revendications 1 à 4, B1 représente la base du 1er nucléotide. 14. Dispositif automatisé pour la synthèse de nucléotides comportant au moins des réservoirs distincts contenant : - des nucléotides, - des activateurs de couplage et- des produits de lavage, des moyens mécaniques de prélèvement et de distribution d'échantillons de produits, ainsi que des moyens informatiques permettant la mise en oeuvre contrôlée de ces moyens mécaniques, ainsi que : au moins un réservoir dans lequel est placé un support solide greffé par un oligomère selon la revendication 7 ou 8, et/ou au moins un réservoir contenant un composé (Ia) ou un composé (Ib) selon la revendication 2. 15. Substrat greffé par au moins un oligonucléotide modifié selon l'une des revendications 10 à 13, ledit substrat comportant au moins une zone de réception revêtue d'un film d'or ou de platine ou greffée par des groupements comportant au moins une double liaison carbone-carbone ou une triple liaison carbone-carbone ou des groupements halogénoacétamide, de préférence des groupements maléimide et/ou acrylamide, ledit substrat étant en métal dans le cas du film d'or et en plastique dans le cas du greffage par des groupements comportant au moins une double liaison carbone-carbone ou une triple liaison carbone-carbone ou des groupements halogénoacétamide, de préférence des groupements maléimide et/ou acrylamide. 16. Substrat selon la revendication précédente dans lequel le substrat en métal est en cuivre ou en titane et/ou le substrat en plastique est en polystyrène. 17. Kit de test comprenant : - au moins un substrat comportant au moins une zone de réception revêtue d'un film métallique d'or ou de platine ou d'un substrat greffé par des groupements comportant au moins une double liaison carbone-carbone ou une triple liaison carbone-carbone ou des groupements halogénoacétamide, de préférence des groupements maléimide et/ou acrylamide, - au moins un oligonucléotide modifié selon l'une des revendications 10 à 13. 18. Utilisation d'un substrat selon la revendication 15 pour réaliser des tests d'affinité entre un oligonucléotide et une autre molécule. 19. Utilisation d'un composé comprenant au moins deux fonctions thiol pour le greffage d'oligonucléotides sur une surface modifiée par des groupements comportant au moins une double liaison carbone-carbone ou une triple liaison carbone-carbone ou des groupements halogénoacétamide, de préférence des groupements maléimide ou acrylamide pour la mise en place d'un test de diagnostic.