Brevet FR2980367A1 — publié le 20130329

METHODE DE TRAITEMENT DE SURFACES CONTAMINEES PAR LE PRION Domaine de l'invention La présente invention concerne une méthode de décontamination de surfaces 5 contaminées par un agent pathogène, notamment le prion. Arrière-plan technique Du fait de l'exposition de la population au nouveau variant de la maladie de Creutzfeldt-Jakob (vMCJ) et devant l'impossibilité de caractériser le risque de transmission 10 de l'agent responsable de cette maladie pour tout patient, des protocoles de décontamination efficaces vis-à-vis des prions ont dû être appliqués en milieu chirurgical. Dans ce cadre, si pour les souches de prion liées aux cas de MCJ sporadiques, le risque se limite principalement aux instruments de neurochirurgie, dans le cas du vMCJ, les tissus lymphoïdes (ganglions, rate, amygdales et formations lymphoïdes de l'intestin) et le sang sont 15 infectieux et généralisent donc le problème à l'ensemble des dispositifs médicaux, et notamment aux endoscopes. Ainsi, s'agissant notamment de ces derniers, il est nécessaire de les décontaminer entre deux actes d'endoscopie pour éviter des contaminations croisées de patients. Par ailleurs, les sous-produits animaux (SPA) en provenance des abattoirs et des 20 établissements d'équarrissage représentent des quantités très importantes de matières premières (près de 3.000.000 tonnes par an en France, 15.000.000 tonnes par an en Europe). Le traitement de ces sous-produits animaux conduit à la production de graisses animales (près de 500.000 tonnes par an en France, 2.500.000 tonnes par an en Europe) d'une part, et de protéines animales transformées (PAT - précédemment appelées farines animales - près de 25 700.000 tonnes par an en France, 3.500.000 tonnes par an en Europe) sous la forme de farines, d'autre part. Avant les années 1990, ces dernières étaient principalement distribuées aux animaux de rente en tant que complément protéique. A l'époque, l'incapacité des procédés de fabrication de ces farines animales à inactiver les Agents transmissibles Non Conventionnels 30 (ATNC), ou prions, a été à l'origine de la contamination de plusieurs centaines de milliers de bovins par l'agent de l'Encéphalopathie Spongiforme Bovine (ESB). Par la suite, la transmission de cette souche de prion du bovin à l'Homme (variante de la Maladie de Creutzfeldt-Jakob) a enclenché deux crises de santé publique et animale en France et en Europe en 1996 puis en 2000. Au début des années 2000, l'introduction des tests de dépistage rapide a mis en évidence la persistance de l'épizootie en France malgré les mesures prises, et révélé l'existence de cas d'ESB dans l'ensemble de l'Europe, y compris dans des pays considérés indemnes jusqu'alors. Les industriels qui ont à charge de collecter les SPA et les produits transformés correspondants (graisses et protéines), doivent ainsi dédier des véhicules de transport aux différentes catégories (camions citerne ou benne). Cette contrainte entraîne des retours à vide, les véhicules étant indisponibles pour des transports d'autre nature. Par ailleurs, il n'existe pas de moyen de décontamination applicable en pratique pour une réaffectation définitive des véhicules pour lesquels le besoin se réduit (notamment les véhicules dédiés au transport de sous-produits et de produits présentant un risque potentiel lié au prion). En conséquence l'immobilisation de ces moyens induit un surcoût pour les industriels et impacte directement le coût du traitement des SPA en général. Les prions sont réputés pour persister pendant plusieurs années dans le milieu extérieur tout en conservant leur caractère infectieux (Brown and Gajdusek, 1991; Georgsson et al., 2006). Ils sont également réputés présenter un large spectre de résistance vis-à-vis de nombreux procédés physico-chimiques classiquement utilisés dans le domaine de l'élimination et l'inactivation des agents biologiques. Par exemple, l'application de peroxyde d'hydrogène à 3% pendant une heure est inefficace. De fait, sur la base d'études réalisées sur des suspensions de prion, seules des méthodes drastiques sont réputées efficaces vis-à-vis de ces agents. Ainsi, l'O.M.S. (W.H.O., 1999) recommande les traitements suivants, par ordre croissant d'efficacité : 1) Autoclavage à 134°C pendant 18 minutes. 2) Immersion pendant 1 heure dans une solution d'hydroxyde de sodium 1N à température ambiante. 3) Immersion pendant 1 heure dans une solution d'hypochlorite de sodium à 2 % de chlore actif à température ambiante. 4) Immersion dans une solution d'hydroxyde de sodium 1N et portée à ébullition pendant 10 minutes. 5) Immersion pendant 1 heure dans une solution d'hydroxyde de sodium 1N ou une solution d'hypochlorite de sodium à 2 % de chlore actif à température ambiante. Rinçage puis autoclavage à sec, à 121°C (autoclave à déplacement de gravité) ou 134°C (autoclave à charge poreuse) pendant 1 heure. 6) Immersion pendant 1 heure dans une solution d'hydroxyde de sodium 1N ou une solution d'hypochlorite de sodium à 2 % de chlore actif à température ambiante. Transfert dans l'eau et autoclavage à 121°C pendant 1 heure. 7) Immersion dans une solution d'hydroxyde de sodium 1N et autoclavage à 121°C pendant 30 minutes. Du fait de leur caractère agressif particulièrement marqué, ces protocoles de décontamination recommandés par l'OMS impliquent d'utiliser du matériel chirurgical supportant ces traitements, en particulier du matériel autoclavable, ou à défaut de le remplacer par son équivalent à usage unique. Toutefois, cela s'avère impossible pour certains matériels, comme les endoscopes, qui sont complexes et coûteux et dont la fragilité les rend non- stérilisables thermiquement. En outre, il n'est pas possible d'appliquer les protocoles les plus efficaces, qui impliquent un autoclavage, à des matériels qui ont un volume important comme les véhicules de transport de farines. En outre, ces derniers résistent mal à la corrosion induite par des concentrations importantes de soude, de potasse ou d'hypochlorite de sodium. Afin de tenter de résoudre ces problèmes, des méthodes n'impliquant pas d'autoclavage, faisant par exemple appel à des solutions moins agressives, ont été développées. On peut citer, à ce titre, la solution commerciale HAMO 100 PID (Steris) qu'il est recommandé de laisser agir 15 minutes à 43°C. Toutefois, l'efficacité de cette solution est discutée (Fichet et al., 2004 ; Hedgeworth et al., 2011). En outre, sa composition n'est pas publique, ce qui ne permet pas de s'assurer de son absence d'agressivité vis-à-vis de surfaces à traiter. Il reste donc à trouver des méthodes alternatives et efficaces de décontamination de surfaces susceptibles d'être contaminées par un agent pathogène, notamment un prion, moins agressives que celles existantes. Description de l'invention La présente invention découle de la mise en évidence inattendue, par les inventeurs, qu'il est possible de décontaminer des surfaces contaminées par le prion ou par des spores de Bacillus subtilis avec une efficacité comparable à celles de l'état de la technique en utilisant une solution tamponnée modérément alcaline puis éventuellement une solution modérément oxydante. Avantageusement, bien que de même nature (solution alcaline ou oxydante), les solutions employées selon l'invention sont moins concentrées que les solutions de l'état de la technique, ce qui leur confère un caractère moins agressif et permet de préserver les surfaces traitées. En outre, leur prix de revient est inférieur ou égal à celui des produits couramment utilisés. L'invention repose sur un procédé de décontamination en une ou deux étapes, correspondant, dans une première étape, à une déstabilisation réversible ou irréversible des agents pathogènes, dont les prions, éventuellement suivie, dans une deuxième étape, d'une élimination et/ou inactivation irréversible. De manière intéressante, l'inversion des étapes peut rendre le procédé inefficace. Sans vouloir être limité à une théorie particulière, les inventeurs pensent que la première étape permet de fragiliser ou de détruire les protéines de l'agent pathogène et de favoriser l'hydratation de la souillure organique incorporant l'agent pathogène, en utilisant une solution aqueuse alcaline. Cette première étape conduirait donc à une déstabilisation réversible, voire irréversible, des protéines associées à l'agent pathogène. Par ailleurs, cette étape peut également conduire à l'élimination des souillures organiques et des biofilms. La seconde étape, basée sur une solution oxydante, permet la destruction du potentiel infectieux des éventuels agents pathogènes fragilisés résiduels, qui sont traitées à coeur. Ainsi, la présente invention concerne un procédé de décontamination d'une surface susceptible d'être contaminée par un agent pathogène comprenant : - dans une première étape, la mise en contact de la surface avec une première solution ayant un pH supérieur ou égal à 9,5 et inférieur à 13, comprenant au moins une base faible ayant au moins un pKa compris entre 8 et 13 et dont la concentration dans la solution est d'au moins 5.10'3 mol.l 1; - suivie, de manière optionnelle, lorsque le pH de la première solution est supérieur à 10,2, ou de manière obligatoire, lorsque le pH de la première solution est inférieur ou égal à 10,2, d'une deuxième étape comprenant la mise en contact de la surface avec une deuxième solution comprenant un agent oxydant à une concentration d'au moins 50 ppm. Une « surface » selon l'invention peut être de tout type susceptible d'avoir été en contact avec un agent pathogène. Toutefois, de manière préférée, la surface selon l'invention appartient à un instrument chirurgical, tel qu'un endoscope, notamment susceptible d'avoir servi, ou ayant servi, sur un individu susceptible d'être contaminé, ou étant contaminé, par un agent pathogène, ou à un véhicule de transport de sous-produits animaux transformés ou non, notamment susceptibles d'être contaminés par un agent pathogène. Comme on l'entend ici, les sous-produits animaux, transformés ou non, englobent, notamment, les carcasses animales, 10 notamment de bovins. Comme on l'entend ici, la « décontamination d'une surface susceptible d'être contaminée par un agent pathogène » désigne la réduction de la quantité d'agents pathogènes éventuellement présents sur la surface. La réduction peut être due à un décrochage de l'agent pathogène de la surface et/ou à une destruction de l'agent pathogène ; on préfère, toutefois, 15 selon l'invention, qu'il s'agisse d'une destruction de l'agent pathogène. En particulier, la « décontamination » selon l'invention consiste préférablement à réduire d'au moins 80%, 90%, 95%, 99%, 99,9%, 99,99%, ou 99,999% la quantité d'agent pathogène présent sur la surface selon l'invention. Les « agents pathogènes » selon l'invention peuvent être de tout type et sont 20 notamment sélectionnés dans le groupe constitué d'un prion, d'un virus, d'une bactérie, d'un champignon, d'un protozoaire, et d'une spore de champignon ou de bactérie. De préférence, l'agent pathogène selon l'invention est un prion, une spore de bactérie, notamment du genre Bacillus, ou une mycobactérie. De manière particulièrement préférée, l'agent pathogène selon l'invention est un prion. Lorsque l'agent pathogène selon l'invention est un prion, la protéine 25 constitutive du prion, ou PrP, se trouve essentiellement sous sa forme résistante, pathogène, PrPres. Une « solution » selon l'invention est une solution aqueuse. La première solution selon l'invention, également nommée solution alcaline ou solution déstabilisante, a un pH supérieur ou égal à 9,5 et inférieur à 13. De préférence, le pH de la première solution est inférieur ou 30 égal à 12,5, ou 12. De préférence également, le pH de la première solution est supérieur ou égal à 10,5, 11, ou 11,5. Comme on l'entend ici, le pH est mesuré à 20°C et à la pression atmosphérique. Une « base » selon l'invention désigne un composé susceptible de capter un proton (H+) et/ou de libérer un ion hydrogénate (OH") dans une solution qui la contient. Une base est dite faible si, lorsqu'elle est ajoutée à une solution, elle capte significativement moins d'ions H+ et/ou qu'elle génère significativement moins d'ions OH- que la quantité de base qui est ajoutée à la solution. Ainsi, la base faible selon l'invention doit bien être distinguée d'une base forte, telle que la potasse (KOH) ou la soude (NaOH). Par ailleurs, la base faible selon l'invention a un pKa compris entre 8 et 13, c'est-à-dire supérieur ou égal à 8 et inférieur ou égal à 13. De préférence, le pKa est inférieur ou égal à 12,5, 12, 11,5 ou 11. De préférence également, le pKa est supérieur ou égal à 8,5, 9, 9,5, ou 10. Comme on l'entend ici, la base faible selon l'invention peut avoir une ou plusieurs fonctions basiques. Lorsque la base faible selon l'invention comprend plusieurs fonctions basiques, le pKa selon l'invention est celui d'au moins l'une d'entre elles. La concentration de la base faible selon l'invention dans la solution est d'au moins 5.10-3 molli, de préférence au moins 10-2, 2.10-2, 3.10-2, 4.10-2, 5.10-2, 6.10-2, 7.10-2, 8.10-2, 9.10-2, ou 10-1 mo1.1-1. De préférence également, la concentration de la base faible selon l'invention est d'au plus 1 molli ou 0,5 mo1.1-1. Comme on l'entend ici, la concentration de la base faible désigne la concentration de la totalité des formes acido-basiques de la base faible dans la première solution. Par exemple, lorsque la base faible est un sel de carbonate, la concentration de la base faible dans la solution désigne la somme du nombre de moles de C032-, de HCO3-, et de H2CO3 dans la solution rapporté au volume de la solution ; pratiquement, étant donné le pH de la première solution, le nombre de moles de H2CO3 pourra toutefois être négligé. La base faible selon l'invention peut être de toute nature. Toutefois, on préfère que la base faible selon l'invention soit un sel de carbonate, notamment du carbonate de sodium ou du carbonate de potassium. Comme on l'entend ici, un sel de carbonate désigne un sel de C032-, un sel de HCO3-, ou une combinaison des deux. Un sel de carbonate selon l'invention se dissocie de manière essentiellement complète dans la première ou la deuxième solution selon l'invention. L'homme du métier sait parfaitement préparer une solution d'une concentration donnée d'une base faible à un pH particulier. Selon la base faible et le pH visé, on peut ajouter à la solution la base faible sous sa forme basique et/ou acide (c'est-à-dire ayant fixé un proton) et éventuellement ajuster le pH par l'ajout d'une base forte, telle que la potasse (KOH) ou la soude (NaOH). Ainsi, lorsque la base faible selon l'invention est un sel de carbonate, la première solution peut être préparée en ajoutant du Na2CO3, ou du K2CO3, et/ou du NaHCO3, ou du KHCO3, et éventuellement en ajustant le pH à l'aide de potasse et/ou de soude. Comme on l'entend ici, la deuxième étape est obligatoirement comprise dans le procédé selon l'invention lorsque le pH de la première solution est inférieur ou égal à un pH compris entre 10 et 10,5, de préférence lorsque ce pH est inférieur ou égal à 10,2 ou 10,4. En effet, dans ce cas là la première solution ne permet pas toujours de décontaminer la surface de manière satisfaisante. En revanche, lorsque le pH de la première solution est supérieur à un pH compris entre 10 et 10,5, de préférence lorsque ce pH est supérieur à 10,2 ou 10,4, alors la deuxième étape peut être ou ne pas être incluse dans le procédé selon l'invention, dans la mesure où la première solution peut alors suffire pour décontaminer la surface de manière satisfaisante. Comme on l'entend ici, un agent oxydant désigne tout agent susceptible de capter un électron. De préférence, l'agent oxydant selon l'invention est capable de générer une espèce réactive de l'oxygène. Selon un mode de réalisation préféré de l'invention, l'agent oxydant selon l'invention est halogéné. Plus préférablement encore, l'agent oxydant est sélectionné dans le groupe constitué d'un sel d'hypochlorite (HOC1), tel que l'hypochlorite de sodium, d'un sel de dichloro isocyanurate, tel que le dichloro isocyanurate de sodium (DCCNa), du peroxyde d'hydrogène (H202), et d'un peracide, tel que l'acide peracétique (APA). De manière particulièrement préférée, l'agent oxydant selon l'invention est un sel d'hypochlorite ou de dichloro isocyanurate. De manière particulièrement préférée également, l'agent oxydant selon l'invention est l'APA. L'agent oxydant selon l'invention est contenu dans la solution à une concentration d'au moins 50 ppm, de préférence au moins 75 ppm, 100 ppm, 500 ppm, 1000 ppm, ou 1500 ppm. De préférence également, l'agent oxydant selon l'invention est contenu dans la solution à une concentration d'au plus 10000 ppm, plus préférablement au plus 5000 ppm, et encore plus préférablement au plus 2000 ppm. Comme l'homme du métier le sait bien 1 ppm = 0,0001% en masse/masse. On préfère particulièrement que la première solution ait un pH d'au moins 11, que la base faible selon l'invention soit un sel de carbonate à une concentration d'au moins 10-2 molli, de préférence au moins 4.10-2 mo1.1-1, et que l'agent agent oxydant soit un sel d'hypochlorite ou de l'APA à une concentration d'au moins 150 ppm. La durée de la première étape peut être ajustée par l'homme du métier. Toutefois, on préfère que la durée de la première étape soit d'au moins 1, 2, 3, 4 ou 5 minutes, de préférence au moins 10 ou 15 minutes, encore plus préférablement au moins 30 minutes. On préfère également, que la première étape ait une durée de moins de deux heures, plus préférablement de moins d'une heure. La durée de la deuxième étape peut également être ajustée par l'homme du métier. Toutefois, on préfère que la durée de la deuxième étape soit d'au moins 1, 2, 3, 4 ou 5 minutes, de préférence au moins 10 ou 15 minutes, encore plus préférablement au moins 30 minutes. On préfère également, que la deuxième étape ait une durée de moins de deux heures, plus préférablement de moins d'une heure. De préférence la première étape et/ou la deuxième étape est conduite à moins de 100°C, plus préférablement moins de 80°C, encore plus préférablement moins de 60°C. Plus généralement, on préfère que le procédé selon l'invention ne comprenne pas d'étape conduite à plus de 100°C, en particulier à plus de 80°C, et plus particulièrement à plus de 60°C. On préfère également que le procédé selon l'invention ne comprenne pas d'étape d'autoclavage. Ainsi, de manière particulièrement préférée le procédé selon l'invention est mis en oeuvre à température ambiante. Comme cela apparaitra clairement à l'homme du métier la température ambiante peut varier en fonction de la région géographique dans laquelle il est mis en oeuvre, de la saison ou de l'heure de la journée, notamment lorsque le procédé de l'invention est conduit en plein air Ainsi, en hiver, le procédé selon l'invention pourra être mis en oeuvre à des températures de moins de 10°C et en été à des températures de plus de 30°C. Dans une définition particulière selon l'invention, toutefois, l'expression « température ambiante » vise préférentiellement des températures de 18°C à 25°C. Par ailleurs, on préfère également que la température de la première solution et/ou de 20 la deuxième solution au moment de la mise en contact avec la surface soit d'au moins 20°C, plus préférablement d'au moins 30°C, et plus préférablement encore d'au moins 40°C. Cette température peut être maintenue au cours de la mise en contact ou bien être laissée décroitre. De manière particulièrement préférée, la première étape est conduite pendant 5 min à 43°C ou pendant 15 min à température ambiante, notamment à une température de 18°C à 25 25°C. La première étape et la deuxième étape selon l'invention peuvent être fractionnées, c'est-à-dire que ces étapes peuvent comprendre chacune plusieurs périodes de durées différentes, chacune des périodes pouvant être associée à une température particulière. Ainsi, à titre d'exemple, la première étape selon l'invention peut comprendre une première période 30 de 5 min à 43°C, suivie d'une deuxième période de 10 min à température ambiante. Par ailleurs, comme cela apparaitra clairement à l'homme du métier le procédé selon l'invention peut être répété au moins 2 fois, notamment au moins 3, 4, 5, 6, 7, 8, 9, ou 10 fois, de manière à former un cycle. Comme cela apparaitra clairement à l'homme du métier, chaque répétition du cycle pourra se faire à des températures et sur des durées différentes des autres répétitions du cycle. En outre, la première et la deuxième étape du procédé selon l'invention peuvent être mises en oeuvre consécutivement ou bien être séparées, par exemple par une étape de rinçage. On préfère toutefois que la première et la deuxième étape soient mises en oeuvre consécutivement sans étape intermédiaire. Par ailleurs, dans un mode de réalisation préféré du procédé selon l'invention, la première étape et/ou la deuxième étape comprend également la mise en contact de la surface avec au moins un détergent. En particulier, le détergent peut être présent dans la première et/ou la deuxième solution selon l'invention ; dans ce cas on préfère que le détergent ne modifie pas le pH de la première et/ou de la deuxième solution. Le détergent selon l'invention peut être de tout type. On préfère toutefois qu'il s'agisse d'un détergent non ionique ou anionique. De manière davantage préférée, le détergent selon l'invention est sélectionné dans le groupe constitué d'un octylphénol éthoxylé, tel que l'ifralan OP 11 ou le triton X-100 ; 15 d'un alkylsulfate de sodium, notamment dans lequel le groupement alkyl est en C8-C20, tel que le laurylsulfate de sodium ou sodium dodécyl sulfate (SDS). En outre, dans un autre mode de réalisation préféré du procédé selon l'invention, la première étape et/ou la deuxième étape comprend également la mise en contact de la surface avec au moins un agent chélatant. En particulier, l'agent chélatant peut être présent dans la 20 première et/ou la deuxième solution selon l'invention ; dans ce cas on préfère que l'agent chélatant modifie pas le pH de la première et/ou de la deuxième solution. L'agent chélatant peut être de tout type. On préfère toutefois que l'agent chélatant soit sélectionné dans le groupe constitué du 1-hydroxy éthylidène-1,1-diphosphonate (HEDP), du méthylglycinediacétate (Trilon), l'éthylène diamine tétra-acétate (EDTA), et leurs sels. 25 De préférence, le détergent et l'agent chélatant sont présents dans la première ou la deuxième solution. La concentration du détergent et de l'agent chélatant dans la première ou la deuxième solution est de préférence d'au moins 0,001%, 0,0025%, 0,01%, ou 0,02% exprimé en masse/masse. Par ailleurs, la concentration du détergent et de l'agent chélatant dans la première ou la deuxième solution est de préférence d'au plus 0,5%, 1% ou 2% 30 exprimé en masse/masse. Le détergent et l'agent chélatant sont utiles pour améliorer la décontamination induite par la première et éventuellement la deuxième solution, notamment lorsque l'eau de la solution est de l'eau non désionisée, par exemple lorsqu'il s'agit d'eau ayant une dureté supérieure à O'f, notamment supérieure à 10'f, 20'f, 30'f, 40'f, 50°f ou 60°f, en particulier lorsque la base faible selon l'invention est un sel de carbonate. De manière avantageuse, l'ajout du détergent et/ou de l'agent chélateur permet de limiter l'apport de base faible ou forte nécessaire pour que le pH de la première solution soit conforme à l'invention, notamment lorsque l'eau de la première et/ou de la deuxième solution est une eau présentant une dureté supérieure à O'f. Par ailleurs, le détergent et/ou l'agent chélatant sont également utiles pour renforcer la décontamination du procédé lorsque le pH la première solution est proche des limites basses prévues par l'invention, notamment lorsque le pH de la première solution est de l'ordre de 10,2 pour ne pas avoir à effectuer la deuxième étape selon l'invention. Ainsi, dans un mode de réalisation préféré de l'invention n'incluant pas la deuxième étape selon l'invention, lorsque le pH de la première solution selon l'invention est supérieur ou égal à 10,2 et inférieur ou égal à 11, la première étape selon l'invention comprend la mise en contact de la surface selon l'invention avec au moins un détergent et/ou au moins agent chélatant selon l'invention. Dans un autre mode de réalisation préféré de l'invention incluant la deuxième étape selon l'invention, lorsque le pH de la première solution est supérieur ou égal à 9,5 et inférieur à 10,2, la première étape selon l'invention comprend la mise en contact de la surface selon l'invention avec au moins un détergent et/ou au moins agent chélatant selon l'invention. De manière préférée également, l'osmolarité de la première solution et/ou de la deuxième solution selon l'invention est supérieure ou égal à 10-2, 2.102, 3.10-2, 4.10-2, 5.102, 6.10-2, 7.102, 8.102, 9.10-2, ou 10-1 osmo1.1-1. On préfère aussi que l'osmolarité de la première solution et/ou de la deuxième solution selon l'invention est d'au plus 1 osmo1.1-1 ou 0,5 osmo1.1-1. Par ailleurs, d'une manière générale, l'homme du métier est à même d'adapter les différents paramètres décrits ci-dessus entre eux afin de favoriser la décontamination de la surface par le procédé selon l'invention. Ainsi, lorsqu'on souhaite maintenir un pH de la première solution à une valeur basse on peut, outre ajouter un détergent selon l'invention, également augmenter la concentration de la base faible selon l'invention, augmenter la température de la première étape ou bien augmenter sa durée. De manière semblable, lorsqu'on souhaite mettre en oeuvre le procédé selon l'invention à des températures de l'ordre de 18°C-25°C, on pourra augmenter le pH de la première solution, augmenter la concentration de la base faible, ou bien la durée de la première étape. Description des figures Figure 1 : Effet de la combinaison d'un traitement par un tampon carbonate pH=11 à 100 mM et d'un traitement oxydant par H202 1% ou de l'eau de javel 150 ppm (les chiffres 1 et 2 indiquent l'ordre de passage dans les différents traitements) sur la quantité de PrPres restante après traitement de lames de verre présentant des homogénats de cerveau contaminés par PrPres. Figure 2 : Effet de la combinaison d'un premier traitement par un tampon carbonate pH=11,5 10 à 10 mM et d'un deuxième traitement oxydant par l'acide peracétique à 1000 ppm sur la quantité de PrPres restante après traitement de lames de verre présentant des homogénats de cerveau contaminés par PrPres. Figure 3 : Effet de la combinaison d'un premier traitement par un tampon carbonate pH=11 à 15 10 mM et d'un deuxième traitement oxydant par l'acide peracétique à 1000 ppm aux pH indiqué sur la quantité de PrPres restante après traitement de lames de verre présentant des homogénats de cerveau contaminés par PrPres (les chiffres 1 et 2 indiquent l'ordre de passage dans les différents traitements). 20 Exemple 1.1 Introduction : Les données expérimentales sont de deux types. Une première étape a consisté à réaliser les essais sur des lames de verre avec des homogénats de cerveau pour simuler la contamination surfacique. Les analyses ont alors porté sur la souillure organique résiduelle et la présence de la forme résistance de la protéine du prion (PrPres), marqueur spécifique des encéphalopathies spongiformes subaiguës transmissibles (ESST). Des essais sur des suspensions liquides infectieuses ont été également réalisés afin d'identifier les procédés dont l'efficacité repose sur l'élimination de la contamination de surface (désorption). Les traitements les plus efficaces sont ensuite validés in vivo par inoculation de surface (tiges métalliques) contaminées et traitées à des animaux de laboratoire, en accord avec le « protocole standard prion » préconisé par l'Agence Française de Sécurité Sanitaire des Produits de Santé (AFSSAPS). Enfin, l'efficacité sporicide et mycobactéricide de certains traitements a été analysée sur des surfaces (lames de verre) contaminées par un homogénat de cerveau artificiellement contaminé avec une quantité connue de spore ou de mycobactérie. 1.2 Protocole in vitro: a) Préparation des sources infectieuses et des matrices Les sources infectieuses correspondent à des homogénats de cerveau de hamster infecté par la souche 263K à 10% (poids/volume) dans une solution de PBS. h) Préparation des solutions pour traitement chimique et mesures du pH Les tampons ont été préparés à 20°C ; les pH indiqués correspondent au pH de la solution. Les tampons ont été préparés avec de l'eau osmosée produite à partir d'une station Millipore Elix de traitement d'eau. Différents tampons carbonate-bicarbonate (également nommés tampons carbonates) ont été préparés à partir de solutions de même molarité de bicarbonate de sodium (NaHCO3) et de carbonate de sodium (Na2CO3), dans des proportions variables, et éventuellement par ajout de potasse (KOH), fournissant ainsi un panel de traitements présentant différents pH et différentes molarités (correspondant à la molarité des solutions de carbonate et de bicarbonate utilisées). c) Modélisation-miniaturisation du traitement Vingt microlitres d'homogénat ont été étalés sur une lame de verre (5 cm x 2 cm). Les surfaces ont été séchées à l'air ambiant pendant une durée d'une heure. Les lames ont alors été rincées par immersion de 5 minutes en eau, afin de désorber la souillure organique mal fixée à la surface des lames. Les lames ont de nouveau été séchées pendant une heure, puis le traitement a été appliqué selon le protocole. Après rinçage final de 5 minutes en eau afin d'éliminer le traitement, les lames ont été séchées pendant une heure. La souillure organique résiduelle a alors été récupérée par grattage en présence de 120 µl d'eau, permettant ainsi de resolubiliser cette souillure organique pour les analyses in vitro. d) Analyse in vitro de la PrPres Les souillures organiques resolubilisées ont été mélangées avec de l'homogénat de cerveau de hamster sain à 20% (poids/volume). La PrPres contenue dans ces échantillons a été purifiée au moyen des réactifs du test CEA-BioRad (Barret et al., 2003), puis détectée par western blot, selon le protocole décrit précédemment (Lasmezas et al., 1996). Après purification, les échantillons ont été resuspendus à l'aide d'un tampon Laemmli (Laemmli, 1970), et l'équivalent de 5 mg de cerveau a été déposé sur un gel de polyacrylamide et transféré sur une membrane de nitrocellulose (Schleicher & Schuell). La révélation a été réalisée au moyen d'un anticorps monoclonal de souris reconnaissant spécifiquement la PrP de hamster (3F4). Un anticorps de chèvre anti-souris couplé à la peroxydase a été utilisé comme anticorps secondaire (Southern Biotechnology Associates), et l'immunoréactivité a été mise en évidence par chimiluminescence au moyen du kit ECL Amersham et détectée par autoradiographie. 1.3 Protocole in vivo: a) Dessin général de l'étude Des tiges métalliques (Acier inoxydable « 316 », 5 mm x 0,16 mm pour les hamsters et 3 mm x 0,16 mm pour les souris) ont été contaminées artificiellement par incubation dans une suspension contenant une quantité connue d'agent de la tremblante adapté au hamster (souche 263K) ou d'agent de l'ESB adapté à la souris (souche 6PB1) respectivement (Zobeley et al., 1999 ; Fichet et al., 2004). Après séchage, les tiges ont été soumises à un des protocoles de nettoyage et/ou de désinfection étudiés. Après décontamination, les tiges ont été inoculées individuellement à des animaux de laboratoire (hamster ou souris) par voie intra-cérébrale (i.c.), afin de mesurer l'éventuelle charge infectieuse résiduelle à la surface des tiges. b) Conditions d'hébergement des animaux Les animaux sont hébergés dans une animalerie de haute sécurité de niveau 3. Chaque animal est identifié au moyen d'une puce électronique. Les souris sont réparties au hasard dans des cages à raison de 8 ou 12 animaux par cage, et les hamsters à raison de 4 animaux par cage. Les litières sont changées régulièrement au moins une fois par semaine. c) Souches d'agent La souche d'agent transmissible non conventionnel (ATNC) choisie pour la validation dans le modèle cricétidien est la souche de tremblante 263K, souche sélectionnée et stabilisée chez le hamster syrien et titrant environ 2.1010 DL50 par gramme de cerveau (Kimberlin and Walker, 1967; Adjou et al., 1995). La période d'incubation de la maladie est en moyenne de 70 jours 30 et la mort des animaux survient en moyenne 80 à 90 jours après l'inoculation par voie i.c. de 107 fois la dose létale 50 (DL50). La souche d'ATNC choisie pour la validation dans le modèle murin est une souche d'ESB 6PB1 titrant 108 à 109 DL50 par gramme de cerveau (Lasmézas et al., 1996). Chez la souris C57B1/6, la période d'incubation de la maladie est en moyenne de 150 jours et la mort des animaux survient en moyenne 180 jours après l'inoculation par voie i.c. de 105 DL50. Les inocula positifs ont été préparés à partir de cerveaux de hamsters ou de souris respectivement infectées par les souches de tremblante 263K et d'ESB 6PB1, au stade terminal de la maladie. Les inocula négatifs ont été préparés à partir de cerveaux de hamsters et de souris sains. Les cerveaux ont été homogénéisés à 10 % (poids/volume) dans du PBS. d) Contamination artificielle des tiges Les tiges métalliques ont été contaminées artificiellement. Brièvement, les inocula positifs ont été préparés à partir de cerveaux de hamsters ou de souris respectivement infectées par les souches de tremblante 263K et d'ESB 6PB1, au stade terminal de la maladie. Les inocula négatifs ont été préparés à partir de cerveaux de hamsters et de souris sains. Les cerveaux ont été homogénéisés à 10 % (poids/volume) dans du PBS. Les tiges métalliques ont alors été contaminées par incubation dans les homogénats correspondants pendant 1 heure à température ambiante. Les tiges métalliques dépolies (Acier « 316 », 5 mm x 0,16 mm pour les hamsters et 3 mm x 0,16 mm pour les souris) ont été traitées par ultrasonication pendant 15 minutes dans une solution de triton X-100 à 2 %, rincées dans de l'eau distillée puis séchées à 37°C pendant 1 heure. Les tiges ont été incubées dans 200 ul d'homogénat à 10 % pendant 1 heure à température ambiante. Les tiges ont alors été séchées pendant 16 heures à température ambiante sous hotte à flux laminaire, pour permettre l'adsorption des agents infectieux à la surface des tiges. La durée d'incubation de la maladie étant directement corrélée au titre infectieux de l'inoculum, les tiges contrôles ont été contaminées par incubation dans des dilutions croissantes de 10 en 10 d'inoculum positif dans de l'inoculum négatif, puis inoculées aux animaux. Les animaux sont suivis pour racer la courbe reliant la moyenne des temps de survie à la charge infectieuse inoculée. e) Inoculation à l'animal et suivi des animaux Les animaux anesthésiés ont été inoculés par voie intra-cérébrale (i.c.) à l'aide d'une seule tige, ou à l'aide de 50 pl de surnageant traité. Pour chaque traitement et chaque point des contrôles, 8 ou 12 animaux ont été inoculés. Le titre infectieux est établi sur la base des dates de décès et du constat du stade terminal. 10 L'examen clinique est relié à l'observation des signes pathognomoniques des encéphalopathies subaiguës spongiformes transmissibles (ESST). Avant l'apparition des premiers signes cliniques dans les groupes témoins (jusqu'au 50e jour pour les hamsters, 150e jour pour les souris), les animaux de tous les groupes ont été observés 15 cliniquement une fois par semaine. A partir du 50e jour pour les hamsters et 150e jour pour les souris et jusqu'à la fin de l'étude, les examens cliniques sont pratiqués trois fois par semaine. 20 Les signes cliniques sont de cinq ordres : - Troubles du comportement (excitabilité, troubles de la nidation et du toilettage), - Perte du réflexe de positionnement visuel, Ataxie cérébelleuse, démarche anormale, prostration, Obésité puis amaigrissement, 25 Paraplégie puis tétraplégie. Les observations sont consignées après chaque examen clinique. Les signes cliniques et les décès sont enregistrés. Les animaux au stade terminal de la maladie sont euthanasiés pour limiter la souffrance. 30 En cas de mort des animaux inoculés avec les tiges traitées, la moyenne du temps de survie de ces groupes est comparée à la moyenne des temps de survie des animaux dans les groupes contrôles. Il est alors possible d'estimer la charge infectieuse résiduelle après traitement des tiges, et de déterminer ainsi le niveau de réduction apporté par ce traitement. Douze mois après l'inoculation des hamsters (soit 4 fois le temps d'incubation de la maladie après inoculation par voie i.c. de 107 DL50 pour la souche 263K) et dix-huit mois après l'inoculation des souris (soit 6 fois le temps d'incubation de la maladie après inoculation par voie i.c. de 105 DL50 pour la souche 6PB1), tous les animaux survivants ont été euthanasiés. Les cerveaux de ces animaux ont été prélevés, et la quantité de PrPres éventuellement présente dans ces cerveaux a été estimée au moyen d'une technique biochimique (ELISA ou Western blot). Les cerveaux de certains animaux décédés au cours de l'expérimentation ont également été étudiés à l'aide de ces tests biochimiques. Détection de la PrPres au moyen d'une technique biochimique (ELISA / Western blot) La détection de la PrPres a été réalisée par le test rapide TeSeE BioRad (concentration de la PrPres et détection par Elisa) adapté aux rongeurs, à partir d'un hémisphère cérébral homogénéisé à 20 % dans une solution glucosée à 5 % (Barret et al., 2003). La valeur seuil correspond à 2,5 fois la densité optique (D.O.) moyenne des contrôles négatifs. Les échantillons présentant une D.O. inférieure à la valeur seuil sont considérés comme négatifs. Les échantillons présentant une D.O. supérieure à la valeur seuil sont considérés comme positifs. Certains échantillons positifs ont été confirmés par western blot, selon le protocole décrit précédemment (Lasmezas et al., 1996). Après purification, les échantillons sont resuspendus à l'aide d'un tampon Laemmli (Laemmli, 1970), et l'équivalent de 5 mg de cerveau a été déposé sur un gel de polyacrylamide et transféré sur une membrane de nitrocellulose (Schleicher & Schuell). La révélation a été réalisée au moyen d'un anticorps monoclonal reconnaissant spécifiquement la PrP murine. Un anticorps de chèvre anti-souris couplé à la peroxydase est utilisé comme anticorps secondaire (Southern Biotechnology Associates). L'immunoréactivité a été mise en évidence par chimiluminescence au moyen du kit ECL Amersham et détectée par autoradiographie. 1.4 Résultats 1.4.1 Données expérimentales in vitro sur les prions Principe de l'invention La Figure 1 illustre le principe de la présente invention, à savoir l'efficacité d'une combinaison de deux traitements inefficaces seuls dont la séquence est déterminante. On observe que l'immersion des lames contaminées pendant 5 minutes à température ambiante dans du peroxyde d'hydrogène à 1 % (ligne 1) ou de l'eau de javel à 150 ppm (ligne 3) ne modifie pas significativement la quantité apparente de PrPres par rapport au témoin positif (ligne 10). L'utilisation séquentielle de ces deux produits, quel qu'en soit le sens, n'est pas non plus efficace (ligne 6 et 7). En revanche, tandis que l'immersion pendant 5 minutes en tampon carbonate-bicarbonate 100 mM à pH=11 ne modifie pas non plus la quantité apparente de PrPres (ligne 2), l'utilisation de ce tampon suivie de l'application du peroxyde d'hydrogène (ligne 5) ou de l'eau de javel (ligne 8) réduit de façon significative la quantité de PrPres. A l'inverse, l'utilisation de cette combinaison de produits en sens inverse (lignes 4 et 9) est inefficace. Des résultats similaires peuvent être obtenus également avec l'acide peracétique (Figures 2 et 3). La Figure 2 présente les résultats obtenus en croisant un traitement de déstabilisation (tampon carbonate-bicarbonate 10 mM, pH = 11,5) en présence d'un détergent non ionique (octylphénol éthoxylé, Ifralan OP-11) (0,1 %) et d'un chélateur (acide 1-hydroxy éthylidène1,1-diphosphonique, ou HEDP) (0,1 %), avec deux traitements d'oxydation à base d'acide peracétique titrant 1000 ppm à pH 7,5 ou 8,3 (réalisés à température ambiante, ces deux traitements contiennent de l'ifralan à 0,02 %). La quantité apparente de PrPres est réduite de plus de 2 logs. Un premier traitement de déstabilisation à l'aide d'un tampon carbonate 10 mM à pH 11 a été appliqué pendant 5 minutes à 43°C suivi de l'application de solutions d'acide peracétique 1000 ppm à différents pH (Figure 3). Lorsqu'il est appliqué en premier, ce traitement déstabilisant est efficace seul (ligne 2) et l'utilisation ultérieure de préparations à base d'acide peracétique inefficaces seules (lignes 3 à 5) ne modifie pas cette efficacité (lignes 6 à 13). En revanche, l'utilisation au préalable de l'acide peracétique empêche l'activité de la solution de déstabilisation (lignes 14 à 21) même lorsque ce traitement oxydant est réalisé à des pH supérieurs à 10 (lignes 20 et 21). b) Généralisation Des mélanges, contenant ou non de l'ifralan à 1/1000 et du HEDP à 1/1000, ont été préparés et appliqués pendant 5 minutes à 43°C sur des lames contaminées. Les résultats sont présentés dans le Tableau 1 suivant. Présence d'Ifralan + HEDP Oui Oui Molarité du tampon carbonate 15a 20b 20c pH 11,29 11,45 11,74 Sans rinçage HC10 E E E E : efficace (pas de signal apparent de PrPres) Tableau 1 : Traitement de lames contaminées par le prion par des tampons carbonate-bicarbonate de différents pH, contenant ou non de l'ifralan et du HEDP. D'autres mélanges, contenant ou non de l'ifralan à 1/1000 et du HEDP à 1/1000, ont été préparés et appliqués pendant 5 minutes à 43°C sur des lames contaminées, puis, éventuellement après rinçage, un traitement oxydant (DiChloro isoCyanurate de sodium (troclosène de sodium, DCCNa) à 150 ppm, Hypochlorite (HC10) à 150 ppm, Peroxyde d'hydrogène (H202) à 1%, ou rien) ou une simple application d'eau à été appliqué pendant 5 minutes à 43°C. Les résultats obtenus sont présentés dans les Tableaux 2 à 4 qui suivent. Premier traitement Présence d'Ifralan + HEDP Oui Oui Oui Oui Oui Molarité du tampon carbonate 40d 10e 15t log 15h 10' 15a -a 20b 15j 20' pH 10,43 10,5 10,84 10,92 11,13 11,2 11,29 11,45 11,67 11,74 Second traitement Sans rinçage HCIO HC1O E E E E E E E E E E Avec rinçage E E E E E E E E E E E : efficace (pas de signal apparent de PrPres) Tableau 2 : Traitement de lames contaminées par le prion par des tampons carbonate-bicarbonate de différents pH, contenant ou non de l'ifralan et du HEDP, suivi par un 5 traitement par HC1O Présence d'Ifralan + HEDP Oui Oui Oui Oui Molarité du tampon carbonate 15t l Og 15a 20b 15i 20e pH 10,84 10,92 11,29 11,45 11,67 11,74 Sans rinçage DCCNa DCCNa E E E E E E Avec rinçage E E E E E E E : efficace (pas de signal apparent de PrPres) Tableau 3 : Traitement de lames contaminées par le prion par des tampons carbonate-bicarbonate de différents pH, contenant ou non de l'ifralan et du HEDP, suivi par un 10 traitement par DCCNa Présence d'Ifralan + HEDP Oui Oui Oui Molarité du tampon carbonate 10g 10' 15' 20b 15i 20e pH 10,92 11,2 11,29 11,45 11,67 11,74 Sans rinçage H202 H202 E E E E E E Avec rinçage E E E E E E E efficace (pas de signal apparent de PrPres) Tableau 4 : Traitement de lames contaminées par le prion par des tampons carbonate-bicarbonate de différents pH, contenant ou non de l'ifralan et du HEDP, suivi par un 15 traitement par H202. Les tampons carbonate utilisés dans les expériences dont les résultats sont rapportés dans les Tableaux 1 à 4 précédents ont été préparés comme suit (le tampon correspond aux lettres en exposant utilisées dans les tableaux) Tampon Na2CO3 NaHCO3 KOH a 15 mM (33,7%) 15 mM (66,3%) 15 mM b 20 mM (33,7%) 20 mM (66,3%) 20 mM c 20 mM (33,7%) 20 mM (66,3%) 20 mM d 40 mM (63,7%) 40 mM (36,3%) - e 10 mM (33,7%) 10 mM (66,3%) 5 mM f 15 mM (11,7%) 15 mM (88,3%) 15 mM g 10 mM (63,7%) 10 mM (36,3%) 5 mM h 15 mM (11,7%) 15 mM (88,3%) 15 mM i 10 mM (63,7%) 10 mM (36,3%) 5 mM j 15 mM (33,7%) 15 mM (66,3%) 15 mM En outre, l'effet de combinaisons additionnelles de tampons carbonate-bicarbonate, à différentes concentrations et différents pH, avec un ou plusieurs détergents (laurylsulfate de sodium (Sulfétal, Texapon)) et un agent chélatant (HEDP et méthylglycinediacétate (Trilon)) sur des lames contaminées par le prion ont été testés (Tableau 5). Molarité du tampon carbonate 0 20 10 Sulfétal Texapon HEDP/Trilon pH Souillure PrPres pH Souillure PrPres pH Souillure PrPres - - 6,62 I +++ - 0,01% 8,68 I +++ 0,01% - - 8,72 +++ I 0,01% 0,001% - 8,65 +++ I 0,1% - 8,80 +++ I 0,1% 0,01% - 8,75 +++ I - - HEDP 0,1% 9,40 ++ I 0,01% - HEDP 0,1% 9,25 ++ D 0,01% 0,001% HEDP 0,1% 9,30 + D 0,1% - HEDP 0,1% 9,22 +/- 1 10,44 - E 0,1% 0,01% HEDP 0,1% 9,32 +/- D 10,40 E - - Trilon 0,1% 9,75 ++ I - 0,01% Trilon 0,1% 9,78 +++ I 0,1% - Trilon 0,1% 9,78 +/- D 10,47 - E 0,1% 0,01% Trilon 0,1% 9,76 +/- D 10,20 - E 10,46 - E10 Molarité du tampon carbonate 25 10 Sulfétal Texapon HEDP/Trilon pH Souillure PrPres pH Souillure PrPres - - - 11,40 +/- E 0,01% 0,01% - - 0,01% 0,001% - 0,1% - - 11,01 +/- E 11,39 - E 0,1% 0,01% - 11,02 - E 11,41 - E - HEDP 0,1% 11,57 - E 0,01% - HEDP 0,1% 11,55 - E 0,01% 0,001% HEDP 0,1% 11,54 - E 0,1% - HEDP 0,1% 11,60 - E 0,1% 0,01% HEDP 0,11)/0 11,52 - E - - Trilon 0,1% 11,62 - E - 0,01% Trilon 0,1% 11,62 - E 0,1% - Trilon 0,1% 11,10 - E 11,63 - E 0,1% 0,01% Trilon 0,1% 11,09 - E 11,62 - E I inefficace D déstabilisant (diminution du signal apparent de PrPres) E : efficace (pas de signal apparent de PrPres) Tableau 5 : Traitement de lames contaminées par le prion par des tampons carbonate- bicarbonate de différents pH, contenant ou non du sulfétal, du texapon, du HEDP et/ou du trilon 1.4.2 Données expérimentales in vitro de sporicidie L'effet des différents traitements (tampon carbonate-bicarbonate suivi d'un traitement à l'acide peracétique) sur les spores a été étudié, en prenant comme modèle Bacillus subtilis (Tableau 6) Une suspension d'un nombre connu de spore a été mélangée avec un homogénat de cerveau, afin de travailler avec le même type de matrice que celle utilisée pour les études prion. Après exposition aux différents traitements, la souillure organique résiduelle a été récupérée et mise en culture. La présence résiduelle de souillure organique après application du traitement a été évaluée, visuellement et par mesure de la densité optique de la souillure organique après resolubilisation.20 SANS RINCAGE Premier traitement (15 minutes 25°C) Second Souillure résiduelle Réduction spores traitement (5 minutes 25°C) pH Visuel D.O. H2O H2O +++ 1,297 0 KOH 10mM 12,37 H2O - 0,088 1 1(011 5mM 11,73 H2O + 0,050 0 H2O APA +++ 1,468 4 KOH 10mM 12,37 APA - 0,098 5 KOH 5mM 11,73 APA + 0,152 5 Tampon bicarbonate 10mM + K011 10 mM 10,86 APA ++ 0,448 > 6 Tampon bicarbonate 5mM + KOH 10 mM 11,70 APA +/++ 0,111 > 6 Tampon carbonate (33,7%)-bicarbonate (66,3%) 10mM + KOH 10 mM 11,37 APA +/++ 0,239 > 6 Tableau 6 : Sporicidie de différentes combinaisons (les facteurs de réduction en termes de sporicidie sont exprimés en log). On observe que l'association de ces deux traitements permet d'obtenir une efficacité du protocole complet vis-à-vis des spores des prions, de manière semblable à ce qui est obtenu avec les prions. Des résultats semblables sont obtenus avec un rinçage entre les deux traitements. 1.4.3 Données expérimentales in vivo vis-à-vis des prions Les tiges qui ont été utilisées dans ces études ont subi au préalable à leurs contaminations des traitements drastiques de dépolissage (combinaison de traitements fortement basiques et thermiques), ayant pour but de les vieillir artificiellement d'une part, et de générer des10 anfractuosités d'autre part, de façon à se trouver dans un scénario de surface particulièrement difficile à décontaminer. Une expérience in vivo est en cours (modèle hamster inoculé avec la souche 263K et souris 5 Swiss inoculée avec la souche vMCJ), impliquant un traitement par des tampons carbonate-bicarbonate. 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Procédé de décontamination d'une surface susceptible d'être contaminée par un agent pathogène comprenant : dans une première étape, la mise en contact de la surface avec une première solution ayant un pH supérieur ou égal à 9,5 et inférieur à 13, comprenant au moins une base faible ayant au moins un pKa compris entre 8 et 13 et dont la concentration dans la solution est d'au moins 5.10-3 mo1.1-1; - suivie, de manière optionnelle, lorsque le pH de la première solution est supérieur à 10,2, ou de manière obligatoire, lorsque le pH de la première solution est inférieur ou égal à 10,2, d'une deuxième étape comprenant la mise en contact de la surface avec une deuxième solution comprenant un agent oxydant à une concentration d'au moins 50 ppm. 2. Procédé selon la revendication 1, dans lequel le pH de la première solution est inférieur ou égal à 12,5. 3. Procédé selon la revendication 1 ou 2, dans lequel le pH de la première solution est supérieur ou égal à 10,5. 4. Procédé selon l'une des revendications 1 à 3, dans lequel la durée de la première étape est d'au moins 5 minutes, de préférence au moins 15 minutes. 5. Procédé selon l'une des revendications 1 à 4, dans lequel la durée de la deuxième étape est d'au moins 5 minutes. 6. Procédé selon l'une des revendications 1 à 5, dans lequel le procédé est mis en oeuvre à température ambiante. 7. Procédé selon l'une des revendications 1 à 6, dans lequel la température de la première solution et/ou de la deuxième solution au moment de la mise en contact avec la surface est d'au moins 40°C. 8. Procédé selon l'une des revendications 1 à 7, dans lequel la première étape comprend également la mise en contact de la surface avec un détergent. 9. Procédé selon la revendication 8, dans lequel le détergent est sélectionné dans le groupe constitué d'un octylphénol éthoxylé, d'un alkylsulfate de sodium, et de dodécyl sulfate de sodium. 10. Procédé selon l'une des revendications 1 à 9, dans lequel la première étape comprend également la mise en contact de la surface avec un agent chélatant. 11. Procédé selon la revendication 10, dans lequel l'agent chélatant est sélectionné dans le groupe constitué de 1-hydroxy éthylidène-1,1-diphosphonate (HEDP), de méthylglycinediacétate et d'éthylène diamine tétra-acétate (EDTA). 12. Procédé selon l'une des revendications 1 à 11, dans lequel la base faible est un sel de carbonate. 13. Procédé selon l'une des revendications 1 à 12, dans lequel l'agent oxydant est sélectionné dans le groupe constitué d'un sel d'hypochlorite, d'un sel de dichloro isocyanurate, du 20 peroxyde d'hydrogène, et d'un peracide. 14. Procédé selon l'une des revendications 1 à 13, dans lequel l'agent pathogène est sélectionné dans le groupe constitué d'un prion, d'un virus, d'une bactérie, d'un champignon, d'un protozoaire, et d'une spore de champignon ou de bactérie. 25 15. Procédé selon l'une des revendications 1 à 14, dans lequel l'agent pathogène est un prion.