Brevet FR2975697A1 — publié le 20121130

La présente invention concerne des oligonucléotides et leur utilisation comme amorces universelles pour la détection et l'identification d'espèces de batraciens et/ou poissons, notamment dans des substrats complexes et dégradés. L'identification taxonomique basée sur l'analyse de l'ADN est une approche couramment utilisée aujourd'hui pour identifier des espèces au sein d'un mélange. Un consortium international nommé Barcode for Life a été créé avec comme objectif de permettre la détection d'espèces animales ou végétales à partir d'une séquence d'ADN. Pour identifier les animaux, l'approche consiste à amplifier puis à séquencer une séquence de 648 paires de base du gène mitochondrial cytochrome c oxidase 1 ("CO1"). CO1 s'est montré efficace pour l'identification des oiseaux, papillons, poissons, mouches et autres groupes animaux (Hebert et al., 2003). Pour les végétaux, la situation est plus complexe et deux autres séquences d'ADN chloroplastiques, matK and rbcL, ont été proposées (Hollingsworth et al., 2009). Il s'avère néanmoins que les fragments choisis selon cette méthode sont de longueur trop longue (supérieure à 500 nucléotides) pour être utilisés dans des substrats dégradés. Or, dans de très nombreuses situations, les substrats à analyser contiennent de l'ADN dégradé, avec souvent des fragments de moins de 100 nucléotides. C'est le cas notamment des échantillons collectés dans l'environnement (sol, eau, fèces) ou des matrices utilisées dans l'industrie, par exemple les farines animales ou les plats industriels de l'industrie alimentaire. Une solution pour la détection et l'identification spécifique consiste à analyser des fragments d'ADN informatifs de petite taille (Poinar et al., 1998; Willersley et al., 2003 ; Willersley et al., 2007). Des amorces ont ainsi été définies afin d'amplifier des fragments d'ADN végétaux plus courts dans des échantillons de sols gelés. Néanmoins, les amorces permettent d'identifier les familles mais pas les espèces végétales. En outre, les amorces n'ont pas été choisies de manière à amplifier des séquences suffisamment conservées dans le règne végétal pour permettre l'amplification de toute espèce végétale. En d'autres mots, ces amorces ne sont pas véritablement universelles. WO 2006/024751 décrit un procédé permettant de détecter simultanément dans un échantillon de matière biologique la présence éventuelle de matières biologiques par réaction de polymérisation en chaîne (PCR) puis hybridation avec des sondes. Les amorces décrites sont très dégénérées (pratiquement chaque codon comporte un nucléotide dégénéré) et manquent par conséquent de spécificité pour l'amplification de l'ADN de vertébrés. Le brevet EP1797201 propose des oligonucléotides permettant la détection et l'identification de végétaux dans des substrats complexes ou dégradés car la région amplifiée est à la fois courte et très variable. Plus précisément, la région amplifiée correspond à une région variable de l'intron du gène chloroplastique trnL du tabac. A cet égard, référence est faite également à l'article de Taberlet et al., 2007. Les amorces décrites dans ce brevet sont spécifiques des espèces végétales et elles ne permettent pas l'identification et la détection des espèces de batraciens et/ou poissons dans des substrats complexes ou dégradés. La présente invention propose de nouveaux oligonucléotides et leurs utilisations comme amorces universelles pour l'identification et la détection des espèces batraciens et/ou poissons. Ces amorces permettent à la fois d'amplifier une région courte (moins de 95 paires de base), une région très variable entre les espèces batraciens et/ou poissons et une région présentant dans le même temps des régions flanquantes très conservées permettant l'amplification à l'aide une seule et unique paire d'amorces. Ainsi ces amorces peuvent être utilisées dans des mélanges complexes et dégradés, par exemple des échantillons de sols, de fèces et d'eau. De telles amorces trouvent notamment des applications dans l'analyse des plats industriels susceptibles de contenir des mélanges de batraciens et/ou poissons, mais également pour l'analyse des régimes alimentaires des carnivores à partir des fèces. Plus précisément, ces amorces permettent d'amplifier une région 12S de l'ADN mitochondrial. Il est particulièrement intéressant de disposer d'amorces permettant l'amplification d'ADN mitochondrial car celui-ci représente une cible très accessible dans le cas de substrats dégradés. De plus, l'ADN mitochondrial est présent de manière répétée dans chaque cellule. Les amorces universelles objet de la présente invention sont particulièrement avantageuses car elles sont extrêmement spécifiques des batraciens et/ou poissons et n'amplifient aucun autre groupe taxonomique. Description de l'invention L'invention concerne une paire d'oligonucléotides, selon laquelle le premier oligonucléotide s'hybride de manière sélective à la séquence SEQ ID NO. 4 et le deuxième nucléotide s'hybride de manière sélective à la séquence SEQ ID NO. 5 ou à la séquence SEQ ID NO. 6 dans des conditions de stringences suffisantes pour l'amplification d'une région variable du gène mitochondrial 12S des batraciens et poissons par réaction de polymérisation en chaîne (PCR). Selon un aspect de l'invention, la région amplifiée du gène mitochondrial 12S comporte moins de 95 nucléotides. Selon un autre aspect de l'invention, le premier oligonucléotide présente une séquence nucléotidique SEQ ID NO. 1 et le deuxième oligonucléotide présente une séquence nucléotidique SEQ ID NO. 2 ou SEQ ID NO. 3. Selon un autre aspect encore de l'invention, la région amplifiée par réaction de polymérisation en chaîne présente une séquence nucléotidique sélectionnée dans le groupe consistant en SEQ ID NOS.14-48. La présente invention propose aussi un mélange d'amorces pour l'amplification d'une région variable du gène mitochondrial 12S des batraciens et poissons par réaction de polymérisation en chaîne (PCR) comprenant les amorces d'amplification selon SEQ ID NO.1, SEQ ID NO.2 et SEQ ID NO.3. Selon un aspect de l'invention, le mélange d'amorces comprend en outre une amorce de blocage selon SEQ ID NO.7. La présente invention concerne aussi un procédé d'amplification d'une région du gène mitochondrial 12S des espèces batraciens et poissons, comprenant les étapes suivantes : a) on dispose d'un échantillon susceptible de contenir de l'ADN d'une espèce batracien et/ou poisson; b) on réalise une réaction d'amplification en chaîne en utilisant une paire d'oligonucléotides selon l'invention ou un mélange d'amorces selon l'invention. 3 La présente invention concerne également un procédé de détection d'une espèce batracien et/ou poisson dans un échantillon, comprenant les étapes suivantes : a) on dispose d'un échantillon susceptible de contenir de l'ADN 5 d'une espèce batracien et/ou poisson; b) on isole l'ADN total contenu dans l'échantillon ; c) on réalise une réaction d'amplification en chaîne en utilisant une paire d'oligonucléotides selon l'invention ou un mélange d'amorces selon l'invention; et 10 d) on détecte l'éventuelle présence d'un produit d'amplification. La présente invention concerne aussi un procédé de détection et d'identification d'une espèce batracien et/ou poisson dans un échantillon, comprenant les étapes suivantes : 15 a) on dispose d'un échantillon susceptible de contenir de l'ADN d'une espèce batracien et/ou poisson; b) on isole l'ADN total contenu dans l'échantillon ; c) on réalise une réaction d'amplification en chaîne en utilisant une paire d'oligonucléotides selon l'invention ou un mélange d'amorces selon 20 l'invention; d) on détecte la présence d'un produit d'amplification ; et e) on détermine la séquence du produit d'amplification pour identifier l'espèce batracien et/ou poisson contenue dans l'échantillon. 25 La présente invention propose également un kit pour la détection d'une espèce batracien et/ou poisson dans un échantillon, comprenant une paire d'oligonucléotides selon l'invention ou un mélange d'amorces selon l'invention et au moins un réactif additionnel. Selon un aspect de l'invention, le kit comprend une autre paire 30 d'oligonucléotides choisis parmi les paires d'amorces : - amorces d'amplification selon SEQ ID NO.8 et SEQ ID NO.9, éventuellement avec amorce de blocage selon SEQ ID NO.10 ; et - amorces d'amplification selon SEQ ID NO.11 et SEQ ID NO.12, éventuellement avec amorce de blocage selon SEQ ID NO.13. 35 La présente invention concerne aussi l'utilisation d'au moins une partie de la région du gène mitochondrial 12S des batraciens et/ou poissons correspondant aux positions 3525 à 3618 du gène 12S mitochondrial de Rana nigromaculata (NC_002805) pour détecter des espèces de batracien et/ou des espèces de poisson. Selon un aspect de l'invention, la partie de ladite région correspond aux positions 3542 à 3595 du gène 12S mitochondrial de Rana nigromaculata (NC 002805) et est sélectionnée dans le groupe consistant en SEQ ID NOS. 14-48. Description du listaqe de séquences SEQ ID NO.1 : amorce BT F SEQ ID NO.2 : amorce B R SEQ ID NO.3 : amorce T_R SEQ ID NO.4 : séquence de la région complémentaire de l'amorce BT_F SEQ ID NO.5 : séquence de la région complémentaire de l'amorce B_R SEQ ID NO.6 : séquence de la région complémentaire de l'amorce T_R SEQ ID NOS.8-9 et 11-12 : paire d'amorces d'amplification additionnelles pouvant être ajoutées au kit de détection selon l'invention SEQ ID NOS.7, 10 et 13: amorces de blocage SEQ ID NOS.14-48 : exemples de séquences variables amplifiées de différentes espèces de batraciens et poissons SEQ ID NOS. 49-50 : variants de l'amorce BT_F SEQ ID NOS. 51-52 : variants de l'amorce B_R Paire d'oliqonucléotides La présente invention concerne donc des oligonucléotides dérivés de deux régions conservées d'un gène 12S mitochondrial présent chez les batraciens et poissons. Ces oligonucléotides peuvent être utilisés comme amorces pour l'amplification et donc la détection de l'ADN de batraciens et poissons dans un échantillon susceptible de contenir un tel ADN. En effet, les régions conservées dont sont dérivés les polynucléotides de la présente invention flanquent une région à la fois courte et très variable de l'ADN des batraciens et poissons, plus précisement une région courte et variable dans le gène 12S mitochondrial des batraciens et poissons. La variablité de cette région entre espèces de batraciens et poissons peut donc être utilisée pour détecter et identifier les espèces de batraciens et poissons. Selon la présente invention, on entend par « oligonucléotide » une chaîne nucléotidique simple brin ou son complémentaire pouvant être de type ADN ou ARN, ou une chaîne nucléotidique double brin pouvant être de type ADN complémentaire ou génomique. Selon un mode réalisation, les oligonucléotides de l'invention sont de type ADN, notamment ADN double brin. Le terme « oligonucléotide » désigne également les polynucléotides modifiés. Les oligonucléotides modifiés sont par exemple des oligonucléotides conjugués à des réactifs de liaison (biotine par exemple) ou à des réactifs marqués (marqueurs fluorescents par exemple). Classiquement, les réactifs de liaison ou les réactifs marqués conjugués aux oligonucléotides facilitent la purification ou la détection de ces oligonucléotides. Les oligonucléotides de la présente invention peuvent être préparés par synthèse chimique ou par des techniques classiques de biologie moléculaire telles que décrites par Sambrook, Fristsch et Maniatis, dans leur ouvrage intitulé "Molecular cloning: a laboratory manual", édition : Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, NY, 1989. Les oligonucléotides de la présente invention peuvent également être isolés ou purifiés de leur environnement naturel. Le terme « polynucléotide » peut ici être utilisé en remplacement du terme « oligonucléotide » avec une signification équivalente. On entend par « amorce » une courte séquence d'oligonucléotides qui, hybridée avec une matrice d'acide nucléique, permet à une polymérase d'entamer la synthèse d'un nouveau brin de l'ADN. Le brin produit à partir de l'amorce est complémentaire au brin utilisé comme matrice. Les amorces sont notamment utilisées dans les réactions de polymérisation en chaîne (PCR). On entend par « espèce batracien» ou « espèce poisson » tout organisme faisant respectivement partie du règne batracien ou du règne poisson. La présente invention concerne donc une paire d'oligonucléotides selon laquelle le premier oligonucléotide s'hybride de manière sélective à une région très conservée du gène mitochondrial 12S des batraciens et poissons et le deuxième nucléotide s'hybride de manière sélective à une autre région très conservée du gène mitochondrial 12S des batraciens ou à une autre région très conservée du gène mitochondrial 12S des poissons dans des conditions de stringences suffisantes pour l'amplification de la région variable du gène mitochondrial 12S des batraciens et poissons par réaction de polymérisation en chaîne (PCR), par exemple dans des conditions de forte stringence. La séquence de la première région conservée correspond à la séquence de l'amorce BT_F (SEQ ID NO. 1) et de sa séquence complémentaire (SEQ ID NO. 4). La séquence de la deuxième région conservée correspond à la séquence de l'amorce B_R (SEQ ID NO.2) et de sa séquence complémentaire (SEQ I D NO. 5). Alternativement, la séquence de la deuxième région conservée correspond à la séquence de l'amorce T_R (SEQ ID NO.3) et de sa séquence complémentaire (SEQ ID NO. 6). A titre d'exemple, chez Rana nigromaculata, le premier oligonucléotide de la présente invention se trouve à la position 3525 à 3541 de la séquence NC_002805, et le second oligonucléotide de l'invention se trouve à la position 3596 à 3618 de cette même séquence. Chez Gadus morhua, le premier oligonucléotide de la présente invention se trouve à la position 904 à 920 de la séquence NC_002081, et le second oligonucléotide de l'invention se trouve à la position 983 à 1002 de cette même séquence. L'homme du métier connaît les réactions d'amplification d'ADN et les conditions de stringence permettant une amplification sélective d'une séquence. L'homme du métier connait en particulier les conditions de température d'hybridation et les conditions de composition du tampon d'hybridation. L'homme du métier pourra donc facilement définir différentes variantes des amorces BT F (SEQ ID NO. 1) et B R (SEQ ID NO. 2) ou T R (SEQ ID NO. 3) en utilisant des techniques de routine. Ces variantes s'hybrident aux séquences de référence et permettent l'amplification sélective de la région variable d'intérêt de l'ADN mitochondrial 12S. Deux variantes possible de l'amorce BT_F (SEQ ID NO. 1) sont représentées aux séquences SEQ ID NOS. 49-50. Deux variantes possibles de l'amorce B_R (SEQ ID NO.2) sont représentées aux séquences SEQ ID NOS. 51-52. Habituellement, les variations de séquence sont plutôt introduites à l'extrémité 5' des oligonucléotides pour ne pas compromettre la réaction d'amplification. Classiquement, on peut par exemple introduire des nucléotides supplémentaires à l'extrémité 5' des oligonucléotides. Par « séquence capable de s'hybrider de manière sélective » ou « oligonucléotide capable de s'hybrider de manière sélective », on entend selon l'invention les séquences qui s'hybrident avec la séquence de référence à un niveau supérieur au bruit de fond de manière significative. Le niveau du signal généré par l'interaction entre la séquence capable de s'hybrider de manière sélective et les séquences de référence est généralement 10 fois, de préférence 100 fois plus intense que celui de l'interaction des autres séquences d'ADN générant le bruit de fond. Les conditions d'hybridation stringentes permettant une hybridation sélective sont connues de l'homme du métier. En général, la température d'hybridation et de lavage est inférieure d'au moins 5°C, par exemple 10°C, au Tm de la séquence de référence à un pH donné et pour une force ionique donnée. Typiquement, la température d'hybridation est d'au moins 30°C pour un polynucléotide de 15 à 50 nucléotides et d'au moins 60°C pour un polynucléotide de plus de 50 nucléotides. A titre d'exemple, l'hybridation est réalisée dans le tampon suivant : 6X SSC, 50 mM Tris-HCI (pH 7.5), 1 mM EDTA, 0.02% PVP, 0.02% Ficoll, 0.02% BSA, 500 pg/ml sperme de saumon denaturé DNA. Les lavages sont par exemple réalisés successivement à faible stringence dans un tampon 2X SSC, 0,1% SDS, à moyenne stringence dans un tampon 0,5X SSC, 01% SDS et à forte stringence dans un tampon 0,1X SSC, 0,1%SDS. L'hybridation peut bien entendu être effectuée selon d'autres méthodes usuelles connues de l'homme du métier (voir notamment Sambrook, Fristsch et Maniatis, dans leur ouvrage intitulé "Molecular cloning: a laboratory manual", édition : Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, NY, 1989). Par « stringence », on entend la rigueur des conditions opératoires (notamment la température et la force ionique) dans lesquelles se déroule une hybridation moléculaire. Le paramètre déterminant dans la spécificité et la réversibilité de l'hybridation moléculaire est le Tm ou température de fusion (melting temperature). C'est la température à laquelle la moitié de l'ADN est sous forme monobrin et l'autre moitié sous forme double brin. Le Tm dépend de nombreux facteurs tels que la longueur du fragment d'ADN considéré, sa richesse en cytosines et guanines et la concentration en sels, notamment en ion Na du milieu réactionnel. En pratique, l'expérimentateur peut créer ou supprimer l'hybridation moléculaire en choisissant une température du milieu réactionnel inférieure, égale ou supérieure au Tm. Les conditions de forte stringence sont celles pour lesquelles la température d'hybridation et de lavage est inférieure d'au moins 5°C et jusqu'à moins 10°C au Tm de la séquence de référence à un pH donné et pour une force ionique donnée. Par « amplification », on entend toute amplification enzymatique in 5 vitro d'une séquence définie d'ADN, notamment du type réaction de polymérisation en chaîne (ou Polymerase Chain Reaction, PCR). Les amorces selon l'invention peuvent en outre comporter des étiquettes qui vont permettre d'identifier rapidement l'appartenance de chaque séquence amplifiée à un échantillon de départ. Le terme « queue » peut être 10 utilisée de manière équivalente, à la place du terme « étiquette » (« tags » en anglais). Les étiquettes sont de courtes séquences nucléotidiques, généralement de longueur inférieure à 10 nucléotides. Ces étiquettes sont particulièrement utiles lorsqu'il s'agit d'utiliser des séquenceurs de nouvelle génération qui permettent de séquencer près de 100 000 séquences à la fois. 15 En effet, chaque étiquette correspondant à un échantillon de départ à analyser, on peut ainsi mélanger plusieurs produits d'amplification avant de procéder au séquençage. Ceci est avantageux car mettre en oeuvre un séquençage via un séquenceur de nouvelle génération peut s'avérer être une opération coûteuse. Dans la pratique, les amorces selon l'invention peuvent comporter un fragment 20 nucléotidique additionnel du coté 5' spécifique de chaque échantillon. Après amplification de plusieurs échantillons, mélange des différents produits d'amplification ainsi obtenus, et séquençage, chaque séquence amplifiée est ainsi facilement assignée à un échantillon de départ. Les étiquettes constituent donc un outil particulièrement avantageux lorsqu'il s'agit de séquencer à haut 25 débit (Binladen et al., 2007). Habituellement, l'amplification comporte des cycles successifs (généralement de 20 à 40) d'amplification, eux-mêmes composés de trois phases: après une étape de dénaturation (séparation des deux brins de la double hélice) de l'ADN, le positionnement des amorces (courtes séquences 30 d'oligonucléotides spécifiquement choisies) en face de leurs séquences complémentaires, sur les brins d'ADN, et leur fixation sur ces cibles constitue la deuxième phase du procédé (hybridation). La phase d'extension fait intervenir une enzyme, l'ADN polymérase, qui synthétise, à partir des amorces, le brin complémentaire de celui ayant servi de matrice. La répétition de ce cycle 35 conduit à l'amplification exponentielle du fragment d'ADN, également appelé produit d'amplification ou ADN amplifié. Selon un aspect de l'invention, l'hybridation s'effectue à une température comprise entre 45 et 65°C. Notamment, l'hybridation peut s'effectuer à une température comprise entre 45 et 60°C lorsque les amorces ne comportent pas d'étiquette. Alternativement, l'hybridation peut s'effectuer à une température comprise entre 50 et 65°C lorsque les amorces comportent une étiquette. Selon un autre aspect, l'invention concerne une paire d'oligonucléotides, selon laquelle le premier oligonucléotide s'hybride de manière sélective à la séquence SEQ ID NO. 4 et le deuxième nucléotide s'hybride de manière sélective à la séquence SEQ ID NO. 5 dans des conditions de stringences suffisantes pour l'amplification d'une région variable du gène mitochondrial 12S de Rana nigromaculata dont la séquence est représentée à la SEQ ID NO.29 et qui peut être utilisée comme séquence de référence batracien. Selon un autre aspect, l'invention concerne une paire d'oligonucléotides, selon laquelle le premier oligonucléotide s'hybride de manière sélective à la séquence SEQ ID NO. 4 et le deuxième nucléotide s'hybride de manière sélective à la séquence SEQ ID NO. 6 dans des conditions de stringences suffisantes pour l'amplification d'une région variable du gène mitochondrial 12S de Gadus morhua dont la séquence est représentée à la SEQ ID NO.39 et qui peut être utilisée comme séquence de référence poisson. Selon un aspect de l'invention, la paire d'oligonucléotides permet l'amplification d'une région du gène mitochondrial 12S qui comporte moins de 95 nucléotides, en particulier moins de 90 ou moins de 80 nucléotides, amorces non comprises (c'est-à-dire sans compter la longueur des amorces). Disposer d'une paire d'amorce universelle qui permette l'amplification d'une région variable courte est très avantageuse car l'utilisation de telles amorces dans des substrats complexes ou dégradés permet la détection et si besoin l'identification des espèces dans de tels substrats. Les amorces de la présente invention permettent de détecter et identifier plus de 4012 espèces de batraciens et poissons. Les tableaux 1 et 2 représentent une partie des séquences susceptibles d'être amplifié avec les amorces de la présente invention. Selon un aspect de la présente invention, la région amplifiée par réaction de polymérisation en chaîne présente une séquence nucléotidique sélectionnée dans le groupe consistant en l'une quelconque des SEQ ID NOS. 14-48. La présente invention concerne également un mélange d'amorces pour l'amplification d'une région variable du gène mitochondrial 12S des vertébrés par réaction de polymérisation en chaîne (PCR) comprenant les amorces d'amplification BT_F (SEQ ID NO.1), B_R (SEQ ID NO.2) et T_R (SEQ ID NO.3) selon un aspect de l'invention, le mélange comprend en outre une amorce de blocage selon SEQ ID NO.7. Alternativement, l'invention concerne également un mélange d'amorces pour l'amplification d'une région variable du gène mitochondrial 12S des vertébrés par réaction de polymérisation en chaîne (PCR) comprenant les amorces d'amplification BT_F et B_R ou T_R et au moins une autre paire d'oligonucléotides choisies parmi les paires d'amorces : - amorces d'amplification selon SEQ ID NO.8 et SEQ ID NO.9, éventuellement avec amorce de blocage selon SEQ ID NO.10 ; et - amorces d'amplification selon SEQ ID NO.11 et SEQ ID NO.12, éventuellement avec amorce de blocage selon SEQ ID NO.13. Procédés mettant en oeuvre la paire d'oliqonucléotides La présente invention concerne également un procédé d'amplification d'une région du gène mitochondrial 12S des batraciens/poissons, comprenant les étapes suivantes : a) on dispose d'un échantillon contenant de l'ADN de 25 batraciens/poissons ; b) on réalise une réaction d'amplification en chaîne en utilisant une paire d'oligonucléotides selon l'invention. L'échantillon à partir duquel la réaction d'amplification est réalisée peut être collecté dans l'environnement. Dans ce cas, il peut par exemple s'agir 30 d'un échantillon de sol, eau ou fèces. L'échantillon peut également provenir de l'industrie, par exemple des plats industriels (aliments transformés) de l'industrie alimentaire. L'échantillon en question peut par exemple provenir d'un produit qui a été congelé, lyophilisé ou chauffé. Un avantage du procédé selon l'invention utilisant les amorces ci-dessus décrites est que l'ADN contenu dans 35 l'échantillon peut se trouver sous forme dégradée. Cela est principalement dû au fait que les amorces ont été choisies de manière à ce que la région amplifiée soit courte, par exemple de longueur inférieure à 95 paires de bases. Selon un aspect de l'invention, l'hybridation s'effectue à une température comprise entre 45 et 65°C. En fonction du fait que les paires d'oligonucléotides de l'invention comporte ou non une étiquette tel que cela est décrit précédemment, les conditions de l'amplification, en particulier la température d'hybridation, peut ou non varier. Notamment, l'hybridation peut s'effectuer à une température comprise entre 45 et 60°C lorsque les amorces ne comportent pas d'étiquette. Par exemple, on peut utiliser une température de 51-53°C. Alternativement, l'hybridation peut s'effectuer à une température comprise entre 50 et 65°C lorsque les amorces comportent une étiquette. Par exemple, on peut utiliser une température de 57-58°C. L'homme du métier sait adapter la température d'hybridation aux amorces utilisées. Le procédé d'amplification selon l'invention peut nécessiter une étape d'extraction de l'ADN avant d'effectuer l'amplification. On utilise alors par exemple pour cela un kit d'extraction disponible dans le commerce. La présente invention propose également un procédé de détection d'une espèce de batraciens/poissons dans un échantillon. Ce procédé de détection selon l'invention comprend les étapes suivantes : a) on dispose d'un échantillon susceptible de contenir de l'ADN d'espèces batraciens/poissons ; b) on isole l'ADN total contenu dans l'échantillon ; c) on réalise une réaction d'amplification en chaîne en utilisant une paire d'oligonucléotides selon l'invention ; et d) on détecte l'éventuelle présence d'un produit d'amplification. L'invention se rapporte aussi à un procédé de détection et d'identification d'une espèce batraciens/poissons dans un échantillon, comprenant les étapes suivantes : a) on dispose d'un échantillon susceptible de contenir de l'ADN 30 d'espèces batraciens/poissons ; b) on isole l'ADN total contenu dans l'échantillon ; c) on réalise une réaction d'amplification en chaîne en utilisant une paire d'oligonucléotides selon l'invention ; d) on détecte la présence d'un produit d'amplification ; et 35 e) on détermine la séquence du produit d'amplification pour identifier l'espèce batraciens/poissons contenue dans l'échantillon. L'étape de détermination de la séquence correspond au séquençage de celle-ci. Les méthodes et outils de séquençage sont connus de l'homme du métier et un exemple de ce qui peut être utilisé dans la présente invention est donné dans la partie expérimentale. Kit de détection L'invention a également trait à un kit pour la détection d'une espèce batraciens/poissons dans un échantillon, ledit kit comprenant une paire d'oligonucléotides selon l'invention. Selon un aspect de l'invention, le kit comprend en outre une amorce de blocage selon SEQ ID NO.7. Utiliser une amorce de blocage est utile lorsqu'il s'agit d'éviter l'amplification d'une espèce déterminée, par exemple l'homme ou la vache. Ces amorces sont choisies à partir de l'extrémité la plus variable du fragment amplifié, et de manière à ce que l'amorce de blocage se chevauche avec l'amorce d'amplification sur au moins 6 nucléotides, par exemple sur 8 nucléotides. Enfin, il est nécessaire que le Tm de l'amorce de bloquage soit nettement supérieur à celui des amorces d'amplification (au moins 5°C, par exemple 10°C). Selon un autre aspect encore de l'invention, le kit comprend au moins une autre paire d'oligonucléotides. Cette au moins une autre paire d'oligonucléotides peut être alors utilisée à titre de vérification du contenu de l'échantillon ou à titre d'alternatives, par exemple si la paire d'oligonucléotides BT_F (SEQ ID NO. 1) et B_R (SEQ ID NO. 2) ou B_R (SEQ ID NO.3) ne permettait pas l'amplification. Selon un autre aspect encore de l'invention, le kit comprend en outre une étiquette de moins de 10 nucléotides pour l'identification de l'échantillon de départ après séquençage du produit PCR. Le kit selon l'invention peut également en outre contenir de manière non limitative des réactifs additionnels, par exemple une enzyme DNA polymerase, des dNTP, du Tris-HCI, du KCI, du MgCl2 ou du Bovine Serum Albumin (BSA). Utilisations La présente invention concerne également l'utilisation de la région variable du gène mitochondrial 12S des batraciens correspondant aux positions 3542 à 3595 du gène mitochondrial de Rana nigromaculata (NC_002805) pour détecter et/ou identifier des espèces de batraciens/poissons. La présente invention concerne également l'utilisation de la région variable du gène mitochondrial 12S des poissons correspondant aux positions 921 à 982 du gène mitochondrial de Gadus morhua (NC_002081) pour détecter et/ou identifier des espèces de batraciens poissons. Par exemple, cette région variable est sélectionnée dans le groupe consistant en SEQ ID NOS.14-48. A partir de la séquence du gène 12S de Rana nigromaculata ou de Gadus morhua et des positions indiquées, l'homme du métier sait comment identifier les séquences correspondantes dans d'autres espèces batraciens/poissons. Exemples Exemple 1 : Validation par PCR électronique à l'aide du logiciel ecoPCR (Ficetola et al. 2010) des amorces BT F et B_R Cette expérimentation a été conduite avec la version 107 d'EMBL, en tolérant un nombre maximum de trois mésappariements par amorce. Résultats : le nombre total de séquences de batraciens amplifiées est de 5501, dont 2837 séquences uniques correspondant à 2106 espèces et 357 genres. La longueur du fragment amplifié (sans les amorces) varie entre 16 et 71 paires de bases, avec une moyenne de 50,6 paires de bases. Le nombre moyen de mésappariements est de 0,16 pour l'amorce BT_F, et de 0,48 pour l'amorce B_R. Discussion : Etant donné que le nombre de séquences uniques est nettement plus important que le nombre d'espèce, cela indique que la résolution de cette région permet dans la très grande majorité des cas une identification au niveau de l'espèce. Exemple 2 : Validation par PCR électronique à l'aide du logiciel ecoPCR (Ficetola et al. 2010) des amorces BT F et T _R Cette expérimentation a été conduite avec la version 107 d'EMBL, en tolérant 35 un nombre maximum de trois mésappariements par amorce. Résultats : le nombre total de séquences de téléostéens amplifiées est de 2742, dont 1929 séquences uniques correspondant à 1906 espèces et 357 g enres La longueur du fragment amplifié (sans les amorces) varie entre 48 et 91 5 paires de bases, avec une moyenne de 63,4 paires de bases. Le nombre moyen de mésappariements est de 0,21 pour l'amorce BT_F, et de 0,35 pour l'amorce T_R. Discussion : Etant donné que le nombre de séquences uniques est légérement plus important que le nombre d'espèce, cela indique que la résolution de cette 10 région permet dans la majorité des cas une identification au niveau de l'espèce. 16 Tableau 1. Batraciens Tableau élaboré à partir de la version 107 de la base de données EMBL Nom scientifique Numéro Séquence correspondant Séquence amplifiée Séquence correspondant à d'accession à BT_F BR Allobates brueneus K1502047 ACACCGCCCGTCACCCT CCTCTTATACTAAAAATAGTTTTTAACCAAATTCAGCCAATCAGAA GTATACTTACCATGTTACGAC GAGGT TT (SEQ ID NO.14) Aiytes obstetricans AY364340 ACACCGCCCGTCACCCT CCTCAACTAACTCAACCCCCTAATTAAAAACTAACCAGTTAACAAG GTATACTTACCATGTTACGAC AAGAGGC TT (SEQ ID NO.15) Bombina bombina AY458591 ACACCGCCCGTCACCCT CTTCAACTAAACCAACACAATTTTTAATACACAAAATAAGTAAAAG GTATACTTACCATGTTACGAC AAGAGGT TT (SEQ ID NO.16) Bombina variegata AY971143 ACACCGCCCGTCACCCT CTTCAACTAGAACTGATATATTTCTAA.A.ACATAAA.ACGAGTACAAG GTATACTTACCATGTTACGAC AAGAGGT TT (SEQ ID NO.17) Be breb AY325988 ACACCGCCCGTCACCCT CTTCAAAGCTACTAACCTAGTTTCTAACAAACTAAAGCATAACAGA GTATACTTACCATGTTACGAC AGAGGC TT (SEQ ID NO.18) Be calamita EU938400 ACACCGCCCGTCACCCT CTTCAAGGCACTGACATAGTTTTTAACTAACTTAAGCAAAACAGAA GTATACTTACCATGTTACGAC GAGGC TT (SEQ ID NO.19) Bufo viridis AY680267 ACACCGCCCGTCACCCT CTTCAAAGCATAAACAAAGTTTTTAACAAGTTTGAGCATAACAGAA GTATACTTACCATGTTACGAC GAGGC TT (SEQ ID NO.20) Dendrobates auratus AY326030 ACACCGCCCGTCACCCT CCTCAACGCTATTTTAAAGTTTCTTACACATTTTAGCTGCATAGAA GTATACTTACCATGTTACGAC GAGGC TT (SEQ ID NO.21) Dendrobates tinctorius DQ502248 ACACCGCCCGTCACCCT CCTCAACGCTACTTTAAAGTTTCTCACATACCTTAGCTACATAGAA GTACACTTACCATGTTACGAC GAGGC TT (SEQ ID NO.22) Disco lossuspictus AY364342 ACACCGCCCGTCACCCT CTTCAACCCGCCGTATTCAAGTATTTAAATAATTTTGGCAAAAAAG GTATACTTACCATGTTACGAC AAGAGGC TT 17 (SEQ ID NO.23) FI)* v arbore: AY843601 ACACCGCCCGTCACCCT CTTCAAAGCCCGGTATTAGTAATTAACTTAACTTAGCAAATCAGAA GTACGCTTACCATGTTACGAC GAGGC TT (SEQ ID NO.24) ilyla meridionalis AY819370 ACACCGCCCGTCACCCT CTTCAAAGCCTAAACATCAGTAATTAACTCAAACTAGCACACCAGA GTACGCTTACCATGTTACGAC AGAGGC TT (SEQ ID NO.25) l'lethadon cinereus AY728232 ACACCGCCCGTCACCCT CATCAAATATATTACTTTAGAAGAGGA GTAGGCTTACCATGTTACGAC (SEQ ID NO.26) TT Aleuradelespoireti EU880329 ACACCGCCCGTCACCCT CTTCAAACAATATAAAAACCCTATATAAACAGAAATAAAAGAAAGA GTAGACTTACCATGTTACGAC AGAGGC TT (SEQ ID NO.27) Rana catesbeiana AY779206 ACACCGCCCGTCACCCT CTTCGATAGTATCTCACCCCGTTCCTAACCCACTATTACATTTTAG GTACACTTACCATGTTACGAC AAGAGGC TT (SEQ ID NO.28) Ranci nigromaculata NC 002805 CTTCGATAGCACTTCACCCAGGTATTTAACCCAATACCGCATCTTA GAAGAGGC (SEQ ID NO.29) Ranci pipiens AY779221 ACACCGCCCGTCACCCT CTTCGATAGTAAATAATATTGTCCCTAACCCATTATCACGTTTTAG GTACACTTACCATGTTTCGAC AAGAGGC TT (SEQ ID NO.30) Rama temporaria A.249023 ACACCGCCCGTCACCCT CTTCAATAGTACCCCGTATGTTCCTAACCCAACACCACGTTTTAGA GTACACTTACCATGTTACGAC AGAGGC TT (SEQ ID NO.31) Salamandra salamandre DQ283440 ACACCGCCCGTCACCCT CTTCAAATAATTTAAA.A.A.AATCTTAAATAAATAAAGTCAGTAAGTA GTAGACTTACCATGTTACGAC AGAAGAGGC TT (SEQ ID NO.32) Triturus cristatus DQ283441 ACACCGCCCGTCACCCT CTTCAAGAACTATTAGATATTAAATAAACAAAGAAGAA.AAAAGAAG GTAAACTTACCATGTTACGAC AAGAGGC TT (SEQ ID NO.33) Triturus marmoratus EU880337 ACACCGCCCGTCACCCT CTTCAAGCACTATTTTATATTAAATAAACAAAAAGAAAAAAGAAGA GTAAACTTACCATGTTACGAC AGAGGC TT (SEQ ID NO.34) 18 Tableau 2. Poissons téléostéens Tableau élaboré à partir de la version 107 de la base de données EMBL Nom scientifique Séquence amplifiée Numéro d'accession Séquence correspondant à BT F Séquence correspondant à T R Anguilla anguilla AB021887 ACACCGCCCGTCACTCT CCTCGAATAACAATAAAGACAATTCATAAAACAATAAGAACAAAAA CTTCCGGTACACTTACCATG GAGGAGGCAAGTCGTAA (SEQ ID NO.35) Barbus barbus A13238965 ACACCGCCCGTCACTCT CCCCGTCAAAATGCACCAAAATACCTAATGCAACAGCACTGACAAG CTTCCGGTACACTTACCATG GGGAGGCAAGTCGTAA (SEQ ID NO.36) Clupea harengus AP009133 ATACCGCCCGTCACTCT CCCCAGCGACCACCCAAAAAAGGTAAATAACGCAATAATAACAGCA CTTCCGGTATACTTACCATG AGGGGAGGCAAGTCGTAA (SEQ ID NO.37) Exocoetus volitans AP002933 ACACCGCCCGTCACCCT CCCCAAAACCCCTAAAAAGATTAAGTAAAACCATAGATCCAATAAA CTTCCGGTACACTTACCATG GGGGAGGCAAGTCGTAA (SEQ ID NO.38) Gadusmorhua AM489716 ACACCGCCCGTCACTCT CTCCAAATAAACCCTAGATATTACCTAAAATGCTTTTTATAATAAG CTTCCGGTACGCTTACCATG GGGAGGCAAGTCGTAA (SEQ ID NO.39) Hippocampes coronal us AB032030 ACACCGCCCGTCACTCT CCCTAAAACACACTTAAAACTAATTAAAACA1A.ATATTAAACAAGG CTTCCGGTACGCTTACCATG GGAGGCAAGTCGTAA (SEQ ID NO.40) Labrus merula A1810141 ACACCGCCCGTCACTCT CCCCGAGCTTACGTATCTTAATACTTAATGCCTTATAATTGCAAAG CTTCCGGTACACTTACCATG GGGAGGCAAGTCGTAA (SEQ ID NO.41) Lotalota AP004412 ACACCGCCCGTCACTCT CTCCAAATAGACCCTAAATATTACCTAAAATGTTTTATATAATAAG CTTCCGGTACGCTTACCATG GGGAGGCAAGTCGTAA (SEQ ID NO.42) Oncorhvnchusmykiss AF113120 ACACCGCCCGTCACTCT CCCCAAGTTCAACCTGTCCTTCTAACTAAGAAGTTAACCGAACAAA CTTCCGGTACACTTACCATG GGGGAGGCAAGTCGTAA 19 (SEQ ID NO.43) Salmotrutta AM910409 ACACCGCCCGTCACTCT CCCCGAGTTCAATTAATCCTTCTAACTAAGAAGTTAACCGAACAAA CTTCCGGTACACTTACCATG GGGGAGGCAAGTCGTAA (SEQ ID NO.44) Salvelinusalpinus AF154851 ACACCGCCCGTCACTCT CCCCAAGTTTAATTTATCCTTCTAACTAAGAAGTTAACCAAACAAA CTTCCGGTACACTTACCATG GGGGAGGCAAGTCGTAA (SEQ ID NO.45) Salvelinus fontinalis AF154850 ACACCGCCCGTCACTCT CCCCAAGTTTAATTTATCCTTCTAACTAAGAAGTTAACCAAACAAA CTTCCGGTACACTTACCATG GGGGAGGCAAGTCGTAA (SEQ ID NO.46) Sardinapilchardus AP009233 ACACCGCCCGTCACTCT CCCCAACAACTACCTATAAAAATGTAACTAACACAATATTCGCCGC CTTCCGGTACACTTACCATG AAGGGGAGGCAAGTCGTAA (SEQ ID NO.47) Zeusfaber AP002941 ACACCGCCCGTCACTCT CCCCTGTTGGCCCCCAACCTTTCATAAAACCTTTATTAAACAAAGG CTTCCGGTACACTTACCATG GGAGGCAAGTCGTAA (SEQ ID NO.48) REVENDICATIONS1. Paire d'oligonucléotides, selon laquelle le premier oligonucléotide s'hybride de manière sélective à la séquence SEQ ID NO. 4 et le deuxième nucléotide s'hybride de manière sélective à la séquence SEQ ID NO. 5 ou à la séquence SEQ ID NO. 6 dans des conditions de stringences suffisantes pour l'amplification d'une région variable du gène mitochondrial 12S des batraciens et poissons par réaction de polymérisation en chaîne (PCR). 2. Paire d'oligonucléotides selon la revendication 1, selon laquelle la région amplifiée du gène mitochondrial 12S comporte moins de 95 nucléotides. 3. Paire d'oligonucléotides selon la revendication 1 ou 2, selon laquelle le premier oligonucléotide présente une séquence nucléotidique SEQ ID NO. 1 et le deuxième oligonucléotide présente une séquence nucléotidique SEQ ID NO. 2 ou SEQ ID NO. 3. 4. Paire d'oligonucléotides selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce que la région amplifiée par réaction de polymérisation en chaîne présente une séquence nucléotidique sélectionnée dans le groupe consistant en SEQ ID NOS.14-48. 5. Mélange d'amorces pour l'amplification d'une région variable du gène mitochondrial 12S des batraciens et poissons par réaction de polymérisation en chaîne (PCR) comprenant les amorces d'amplification selon SEQ ID NO.1, SEQ ID NO.2 et SEQ ID NO.3. 6. Mélange d'amorces selon la revendication 5, comprenant en 25 outre une amorce de blocage selon SEQ ID NO.7. 7. Procédé d'amplification d'une région du gène mitochondrial 12S des espèces batraciens et poissons, comprenant les étapes suivantes : a) on dispose d'un échantillon susceptible de contenir de l'ADN d'une espèce batracien et/ou poisson; 30 b) on réalise une réaction d'amplification en chaîne en utilisant une paire d'oligonucléotides selon l'une quelconque des revendications 1 à 4 ou un mélange d'amorces selon l'une quelconque des revendications 5-6. 8. Procédé de détection d'une espèce batracien et/ou poisson dans un échantillon, comprenant les étapes suivantes : 35 a) on dispose d'un échantillon susceptible de contenir de l'ADN d'une espèce batracien et/ou poisson;b) on isole l'ADN total contenu dans l'échantillon ; c) on réalise une réaction d'amplification en chaîne en utilisant une paire d'oligonucléotides selon l'une quelconque des revendications 1 à 4 ou un mélange d'amorces selon l'une quelconque des revendications 5-6; et d) on détecte l'éventuelle présence d'un produit d'amplification. 8. Procédé de détection et d'identification d'une espèce batracien et/ou poisson dans un échantillon, comprenant les étapes suivantes : a) on dispose d'un échantillon susceptible de contenir de l'ADN d'une espèce batracien et/ou poisson; b) on isole l'ADN total contenu dans l'échantillon ; c) on réalise une réaction d'amplification en chaîne en utilisant une paire d'oligonucléotides selon l'une quelconque des revendications 1 à 4 ou un mélange d'amorces selon l'une quelconque des revendications 5-6; d) on détecte la présence d'un produit d'amplification ; et e) on détermine la séquence du produit d'amplification pour identifier l'espèce batracien et/ou poisson contenue dans l'échantillon. 9. Kit pour la détection d'une espèce batracien et/ou poisson dans un échantillon, comprenant une paire d'oligonucléotides selon l'une quelconque des revendications 1 à 4 ou un mélange d'amorces selon l'une quelconque des revendications 5-6 et au moins un réactif additionnel. 10. Kit selon la revendication 9, comprenant une autre paire d'oligonucléotides choisis parmi les paires d'amorces : - amorces d'amplification selon SEQ ID NO.8 et SEQ ID NO.9, éventuellement avec amorce de blocage selon SEQ ID NO.10 ; et - amorces d'amplification selon SEQ ID NO.11 et SEQ ID NO.12, éventuellement avec amorce de blocage selon SEQ ID NO.13. 11. Utilisation d'au moins une partie de la région du gène mitochondrial 12S des batraciens et/ou poissons correspondant aux positions 3525 à 3618 du gène 12S mitochondrial de Rana nigromaculata (NC_002805) pour détecter des espèces de batracien et/ou des espèces de poisson. 12. Utilisation selon la revendication 11, selon laquelle la partie de ladite région correspond aux positions 3542 à 3595 du gène 12S mitochondrial de Rana nigromaculata (NC_002805) et est sélectionnée dans le groupe consistant en SEQ ID NOS. 14-48.35