Brevet FR2961826A1 — publié le 20111230

Domaine de l'invention La présente invention concerne le domaine des dispositifs pour déterminer et/ou étudier l'état de stimulation des défenses naturelles de plantes. Plus précisément, cette invention concerne un dispositif comprenant des moyens pour déterminer le niveau ou profil d'expression d'une combinaison déterminée de gènes cibles endogènes dans des plantes ou des parties de plantes, de sorte à identifier la présence, le niveau et/ou l'intensité de la stimulation des défenses naturelles desdits plantes ou parties 1 o de plantes. Art antérieur Les plantes sont exposées à de multiples agressions, lesdites 15 agressions englobant les évènements consistant en des stress dits « abiotiques » (sécheresse, température extrême, rayonnements ultraviolets, etc.) et des stress dits « biotiques » (virus, bactéries, champignons, ravageurs, etc.). Il est connu que les plantes possèdent une pluralité de mécanismes 20 endogènes qui sont capables d'offrir une défense efficace à l'encontre d'un panel large de tels stress. Dans le cas de stress biotiques, trois niveaux de mécanismes de défense peuvent se développer de manière spatio-temporelle à partir du point d'infection ou d'infestation, et concourir à freiner la propagation de la 25 maladie. Sur le site de pénétration du pathogène, les cellules en contact avec l'agent pathogène peuvent s'autodétruire et retarder ainsi sa progression ; ce premier phénomène de défense est connu sous l'appellation de réaction d'hypersensibilité (HR). 30 A partir du site d'infection, des signaux d'alertes peuvent être transmis aux cellules avoisinantes, ce qui crée une zone locale de résistance acquise, où s'accumulent de nombreux composés de défense ; ce second niveau de défense assure une résistance acquise locale (LAR). Des signaux peuvent également être transmis à la plante entière, ce qui induit un troisième niveau de défense : la résistance acquise systémique (SAR). Des phénomènes ou voies physiologiques bien caractérisés des mécanismes de défense inductibles par les agents pathogènes, impliqués dans les niveaux de défense LAR et SAR, sont par exemple : (i) la production de composés anti-microbiens, telles que les protéines relatives aux pathogènes (couramment dénommées « protéines PR » ou « PRP ») et les phytoalexines, (ii) le renforcement des parois cellulaires (dépôt de callose, lignification, réticulation de protéines), et (iii) la production de certaines hormones de plantes, notamment l'acide salicylique (SA), l'acide jasmonique (JA) et l'éthylène (ET), lesdites hormones jouant un rôle important dans la signalisation des mécanismes de défense induits par les stress. En plus de ces réactions de défense induites par le stress, l'induction de la SAR confère, à la plante, la capacité de résister à des attaques ultérieures, y compris dans des localisations distantes par rapport au premier site d'infection ou d'infestation dans ladite plante. Il peut arriver que les mécanismes de défenses ne soient pas activés de manière complète, mais que les tissus soient seulement « sensibilisés ». Une expression plus rapide et renforcée des mécanismes de défense n'est déclenchée qu'après exposition de la plante à un stress ultérieur. Ce phénomène est couramment dénommé « priming » ou « potentialisation ». Cette connaissance approfondie des mécanismes de défense des plantes a permis le développement et l'utilisation de produits phytosanitaires, qui n'agissent plus directement sur la cause du stress, mais qui présentent la propriété d'agir indirectement par l'activation et la stimulation des mécanismes de défense naturelle. De tels produits à effet stimulateur des défenses naturelles (encore dénommés « stimulateurs des défenses naturelles » ou sous l'acronyme « SDN ») peuvent être classés selon deux principales familles : (i) les composés dits « stimulateurs directs », qui entraînent, une fois appliqués sur la plante, une activation complète des réactions de défense, qu'il y ait ou non présence de pathogènes, et (ii) les composés dits « potentialisateurs », qui déclenchent, après application sur la plante, uniquement le phénomène de « potentialisation » précité (les réactions de défense ne s'activant qu'à la suite d'une attaque par un agent pathogène ou un stress). La plupart de ces produits SDN sont encore connus sous l'appellation de « éliciteurs » (ou « éliciter ») ou encore de « inducteurs de résistance ». De nombreuses études ont été menées sur ces mécanismes de défense, et les produits à effet stimulateur des défenses naturelles, à partir d'espèces modèles, en particulier à partir de Arabidopsis thaliana. 1 o On précise toutefois qu'à l'heure actuelle, il n'existe pas de cadre réglementaire spécifique régissant les conditions de mise sur le marché et d'utilisation des produits SDN. Ainsi, pour bénéficier d'une autorisation de mise sur le marché (AMM), de tels produits SDN peuvent entrer (i) tels quels, dans la catégorie des 15 intrants phytopharmaceutiques, ou (ii) en mélange avec des molécules fertilisantes, dans la catégorie des intrants fertilisants. Très peu d'AMM pour intrants phytopharmaceutiques ont été délivrées à ce jour pour des produits SDN. Concernant plus spécifiquement la connaissance des effets de ces 20 intrants sur les plantes, la stimulation des défenses naturelles est généralement étudiée seulement à une échelle cellulaire, par exemple sur suspensions cellulaires ou sur organes détachés. A la connaissance de la demanderesse, un effet de stimulation des défenses naturelles au niveau moléculaire sur les plantes entières n'est 25 généralement pas été démontré. A l'inverse, on connaît une grande diversité de produits homologués comme intrants phytopharmaceutiques ou comme intrants fertilisants, qui seraient susceptibles d'exercer aussi une action de stimulation des défenses naturelles de plantes, bien qu'une telle activité additionnelle n'ait pas été 30 démontrée ou identifiée. Certains produits pourraient également avoir un effet inhibiteur des défenses naturelles de plantes. La situation exposée ci-dessus pour les plantes en général, se retrouve notamment pour les plantes de la famille des Rosaceae qui inclut 35 diverses espèces fruitières. Il existe par conséquent un besoin pour la mise à disposition des professionnels d'un dispositif ou d'outil polyvalent qui permettrait d'identifier, de manière simple et rapide, l'état de stimulation des défenses naturelles de plantes ou de parties de plantes, notamment de la famille des Rosaceae. Ce dispositif ou outil polyvalent aurait également avantageusement comme objectif de permettre le criblage des substances pour leurs propriétés de stimulation des défenses naturelles des plantes, y compris de plantes appartenant à la famille des Rosaceae. Un tel dispositif ou outil devrait en particulier offrir la possibilité de réaliser une discrimination entre (i) les produits SDN qui activent effectivement les défenses des plantes, et (ii) les produits qui sont dépourvus d'un tel effet. Ce dispositif ou outil permettrait ainsi le réaliser le criblage de nouveaux produits SDN et d'effectuer des études diverses sur les SDN, par exemple des études visant à déterminer le ou les mécanismes(s) d'action et/ou la ou les voies moléculaires impliqués dans l'effet de stimulation des défenses d'une plante par un produit SDN particulier, par une combinaison particulière de produits SDN, ou encore par une combinaison entre un ou plusieurs produits SDN avec un ou plusieurs autres intrants susceptibles de présenter une action antagoniste sur la stimulation des défenses. Résumé de l'invention La présente invention est relative à un dispositif pour déterminer ou étudier l'état de stimulation des défenses naturelles de plantes ou parties de plantes, lequel dispositif comprend des moyens de détermination du niveau d'expression d'une combinaison de gènes cibles dans un échantillon de plantes ou parties de plantes, lesdits moyens de détermination comprenant : (a) un moyen de détermination du niveau d'expression d'au moins un gène cible choisi parmi les gènes cibles suivants : PR-1, PR-2, PR-4, PR-5, PR-8, PR-14, PR-15 ; (b) un moyen de détermination du niveau d'expression d'au moins un gène cible choisi parmi les gènes cibles suivants : PAL, CHS, DFR, ANS, PPO ; (c) un moyen de détermination du niveau d'expression d'au moins un gène cible choisi parmi les gènes cibles suivants : HMGR, FPPS, Far ; (d) un moyen de détermination du niveau d'expression du gène cible CSL ; (e) un moyen de détermination du niveau d'expression d'au moins un gène cible choisi parmi les gènes suivants : APDX, GST, PDX ; (f) un moyen de détermination du niveau d'expression d'au moins un gène cible choisi parmi les gènes cibles suivants : CaIS, Pect, CAD ; (g) un moyen de détermination du niveau d'expression d'au moins un gène cible choisi parmi les gènes cibles suivants : EDS1, WRKY ; (h) un moyen de détermination du niveau d'expression d'au moins un gène cible choisi parmi les gènes cibles suivants : LOX2, JAR ; (i) un moyen de détermination du niveau d'expression d'au moins un gène cible choisi parmi les gènes cibles suivants : ACCO, EIN3. Dans certains modes de réalisation, ledit dispositif comprend les moyens de détermination du niveau d'expression de la combinaison des gènes cibles suivants : PR-1, PR-2, PR-4, PR-5, PR-8, PR-14, PR-15, PAL, CHS, DFR, ANS, PPO, HMGR, FPPS, Far, CSL, APDX, GST, PDX, CaIS, Pect, CAD, EDS1, WRKY, LOX2, JAR, ACCO, EIN3. Dans certains modes de réalisation, lesdits moyens de détermination du niveau d'expression d'un gène cible sont choisis parmi (i) les fragments d'acide nucléique capables de s'hybrider de manière spécifique aux ARNm exprimés par ledit gène cible ou aux ADNc correspondants, ou à des fragments desdits ARNm ou desdits ADNc, et/ou (ii) les anticorps se liant spécifiquement aux produits d'expression dudit gène cible, desdits ARNm ou desdits ADNc, ou fragments desdits produits d'expression. Dans certains modes de réalisation, les fragments d'acide nucléique capables de s'hybrider de manière spécifique aux ARNm exprimés par ledit gène cible ou aux ADNc correspondants consistent en des amorces, lesdites amorces étant préférentiellement choisies parmi les séquences suivantes SEQ I D n°32 à 87. La présente invention est également relative à un procédé pour identifier un profil d'expression d'une combinaison de gènes cibles permettant de déterminer, ou au moins d'évaluer, un état de stimulation des défenses naturelles de plantes ou de parties de plantes, lequel procédé comprend les étapes suivantes : (i) déterminer le profil d'expression d'une combinaison de gènes cibles au moyen du dispositif précité, sur un ensemble de plantes ou de parties de plantes, dont l'état de stimulation de leurs défenses naturelles est connu, puis (ii) déterminer un profil d'expression de ladite combinaison de gènes cibles correspondant à un état déterminé de stimulation des défenses naturelles desdites plantes ou parties de plantes, partant des données issues de l'étape (i). L'invention concerne aussi un procédé pour déterminer ou évaluer l'état de stimulation des défenses naturelles d'une plante ou d'une partie de plante, comprenant les étapes suivantes : (i) prélever un échantillon à partir de ladite plante ou de ladite partie de plante, (ii) déterminer le profil d'expression d'une combinaison de gènes cibles dans ledit échantillon prélevé à l'étape (i), au moyen du dispositif précité, (iii) comparer le profil d'expression obtenu à l'étape (ii) avec un profil d'expression de référence, (iv) déterminer ou évaluer l'état de stimulation des défenses naturelles de ladite plante ou de ladite partie de plante, à partir dudit profil d'expression obtenu lors de l'étape (ii). La présente invention concerne encore un procédé pour sélectionner une substance ayant la propriété de moduler l'état de stimulation des défenses naturelles d'une plante ou d'une partie de plante, comprenant les étapes suivantes : (i) mettre en contact ladite plante ou ladite partie de plante avec la substance à tester, (ii) déterminer le profil d'expression d'une combinaison de gènes cibles dans un échantillon prélevé à partir de ladite plante ou de ladite partie de plante suite à l'étape (i), au moyen du dispositif précité, (iii) comparer le profil d'expression obtenu à l'étape (ii) avec un profil d'expression de référence, pour déterminer ou évaluer l'état de stimulation des défenses naturelles dans ledit échantillon, (iv) sélectionner positivement ladite substance si la comparaison à l'étape (iii) montre que ladite substance testée à l'étape (i) module l'état de stimulation des défenses naturelles de ladite plante ou de ladite partie de plante. La présente invention a aussi trait à un procédé pour sélectionner une plante présentant un état de stimulation des défenses naturelles susceptible de leur conférer une résistance améliorée à au moins un stress biotique et/ou abiotique d'intérêt, comprenant les étapes suivantes : (i) appliquer ledit ou lesdits stress à une plante ou une partie de plante, (ii) déterminer le profil d'expression d'une combinaison de gènes cibles dans un échantillon prélevé à partir de la plante ou de ladite partie de plante, au moyen du dispositif précité, (iii) comparer le profil d'expression obtenu à l'étape (ii) avec un profil d'expression de référence, pour déterminer ou évaluer l'état de stimulation des défenses naturelles dans ledit échantillon, (iv) sélectionner positivement ladite plante ou ladite partie de plante si la comparaison de l'étape (iii) montre que ladite plante ou ladite partie de plante possède un état de stimulation des défenses naturelles susceptible de leur conférer une résistance améliorée à au moins un stress biotique et/ou abiotique d'intérêt. Description détaillée de l'invention Les inventeurs ont identifié un ensemble spécifique de gènes cibles, dont le niveau ou profil d'expression constitue un moyen simple et efficace pour déterminer et/ou étudier l'état de stimulation des défenses naturelles de plantes, avantageusement des plantes de la famille des Rosaceae. Les inventeurs ont en effet mis en évidence que l'analyse de l'expression d'une combinaison spécifique de gènes cibles permet de déterminer l'état de stimulation des défenses naturelles de plantes qui sont (i) exposées à un produit SDN, (ii) exposées à une source ou un évènement de stress biotique, (iii) exposées à une source ou un évènement de stress abiotique, ou bien (iv) à une combinaison de deux ou des trois des expositions précitées. Ces résultats ont permis aux inventeurs de mettre au point un dispositif, avantageusement un dispositif comprenant des moyens pour la détermination, avantageusement in vitro, du niveau ou profil d'expression d'une combinaison déterminée de gènes cibles (avantageusement par analyse transcriptomique ciblée ou par analyse protéomique ciblée), dans un échantillon provenant d'une plante, y compris un échantillon provenant d'une partie de plante, y compris d'une plante de la famille des Rosaceae. Les inventeurs ont montré que la détermination in vitro du niveau ou profil d'expression de cette combinaison déterminée de gènes cibles permet l'étude et/ou la détermination de l'état de stimulation des défenses naturelles de la plante dont provient ledit échantillon. La présente invention a ainsi pour objet un nouveau dispositif ou un nouvel outil de recherche, avantageusement un dispositif de biologie moléculaire, pour la caractérisation d'un échantillon biologique, par détermination du niveau d'expression d'une combinaison spécifique de gènes cibles. 1 o Plus précisément, la présente invention concerne un dispositif pour déterminer et/ou étudier l'état de stimulation des défenses naturelles de plantes, lequel dispositif comprend des moyens pour déterminer le niveau ou profil d'expression d'une combinaison de gènes cibles dans un échantillon de plante ou de partie de plante, lesdits moyens de détermination comprenant : 15 (a) un moyen de détermination du niveau d'expression d'au moins un gène cible choisi parmi les gènes cibles suivants : PR-1, PR-2, PR-4, PR-5, PR-8, PR-14, PR-15 ; (b) un moyen de détermination du niveau d'expression d'au moins un gène cible choisi parmi les gènes cibles suivants : PAL, CHS, DFR, ANS, PPO ; 20 (c) un moyen de détermination du niveau d'expression d'au moins un gène cible choisi parmi les gènes cibles suivants : HMGR, FPPS, Far ; (d) un moyen de détermination du niveau d'expression du gène cible CSL ; (e) un moyen de détermination du niveau d'expression d'au moins un gène cible choisi parmi les gènes suivants : APDX, GST, PDX ; 25 (f) un moyen de détermination du niveau d'expression d'au moins un gène cible choisi parmi les gènes cibles suivants : CaIS, Pect, CAD ; (g) un moyen de détermination du niveau d'expression d'au moins un gène cible choisi parmi les gènes cibles suivants : EDS1, WRKY ; (h) un moyen de détermination du niveau d'expression d'au moins un gène 30 cible choisi parmi les gènes cibles suivants : LOX2, JAR ; (i) un moyen de détermination du niveau d'expression d'au moins un gène cible choisi parmi les gènes cibles suivants : ACCO, EIN3. Malgré le nombre limité et déterminé de gènes cibles analysés, les inventeurs ont montré que le dispositif selon l'invention constitue un outil 35 particulièrement polyvalent et puissant, autorisant l'étude et/ou la détermination de l'état de stimulation des défenses naturelles des plantes (i) exposées à un ou plusieurs composés ou à une ou plusieurs compositions stimulateurs de défenses naturelles et/ou (ii) exposées à une grande variété de stress, ce qui englobe aussi bien des stress biotiques que des stress abiotiques, et/ou (iii) exposées à une combinaison des expositions précitées (i) et (ii). Le dispositif selon l'invention présente l'intérêt d'apporter des résultats simples, rapides et efficacement interprétables, sur l'état de stimulation des défenses naturelles d'une plante. 1 o Le dispositif selon l'invention permet notamment d'étudier et/ou d'identifier des composés candidats, susceptibles de consister en des stimulateurs des défenses naturelles des plantes et capable d'induire un mécanisme de réaction des plantes à l'encontre d'une agression par des organismes nuisibles et/ou un mécanisme de réaction de défense à 15 l'encontre des stress abiotiques naturels. Selon un mode de réalisation préféré, le dispositif selon l'invention comprend les moyens de détermination du niveau d'expression des gènes suivants : (i) pour le groupe (a), un moyen de détermination du niveau d'expression de 20 l'un au moins des gènes suivants : PR-1, PR-2, PR-4 ou PR-8, un moyen de détermination du niveau d'expression du gène PR-5, un moyen de détermination du niveau d'expression du gène PR-14 et un moyen de détermination du niveau d'expression du gène PR-15, et/ou (ii) pour le groupe (b), un moyen de détermination du niveau d'expression du 25 gène PAL, un moyen de détermination du niveau d'expression de l'un au moins des gènes suivants : CHS, DFR ou ANS, et un moyen de détermination du niveau d'expression du gène PPO, et/ou (iii) pour le groupe (c), un moyen de détermination du niveau d'expression de l'un au moins des gènes suivants : HMGR et Far, et un moyen de 30 détermination du niveau d'expression du gène FPPS, et/ou (iv) pour le groupe (e), un moyen de détermination du niveau d'expression du gène APDX et un moyen de détermination du niveau d'expression de l'un au moins des gènes suivants : GST et PDX. Selon un mode de réalisation encore préféré, ce dispositif comprend 35 les moyens de détermination du niveau d'expression de la combinaison des gènes cibles suivants : PR-1, PR-2, PR-4, PR-5, PR-8, PR-14, PR-15, PAL, CHS, DFR, ANS, PPO, HMGR, FPPS, Far, CSL, APDX, GST, PDX, CaIS, Pect, CAD, EDS1, WRKY, LOX2, JAR, ACCO, EIN3. Les moyen de détermination du niveau d'expression d'un gène cible sont avantageusement choisis parmi (i) les fragments d'acide nucléique capables de s'hybrider de manière spécifique aux ARNm exprimés par ledit gène cible ou aux ADNc correspondants, ou à des fragments desdits ARNm ou desdits ADNc, et/ou (ii) les anticorps se liant spécifiquement aux produits d'expression dudit gène cible, desdits ARNm ou desdits ADNc, ou fragments 1 o desdits produits d'expression. Dans les modes de réalisation (i) ci-dessus, les fragments d'acide nucléique précités consistent avantageusement en des amorces nucléotidiques s'hybridant spécifiquement avec les ARNm, les ADNc, ou des fragments de ceux-ci, dérivés de chacun des gènes cibles d'intérêt. 15 Dans certains modes de réalisation, les amorces nucléotidiques correspondantes sont avantageusement adaptées à la détermination du niveau d'expression des gènes cibles par une méthode de PCR quantitative. Les amorces nucléotidiques sont avantageusement choisies parmi les séquences suivantes SEQ ID n°32 à 87. L'utilisation de ces amorces, dans le 20 disposition selon l'invention, est illustrée dans les exemples. Selon un mode particulier de réalisation, les fragments d'acide nucléique ou lesdits anticorps sont immobilisés sur un support. Dans les modes de réalisation du dispositif dans lesquels les moyens de détermination du niveau d'expression d'un gène cible consistent en des 25 acides nucléiques, ledit dispositif consiste ainsi avantageusement en une puce à ADN, pouvant être désignée encore sous la dénomination de « puce à faible densité quantitative » ou « qPFD » (du fait du nombre limité de gènes ciblés). Dans les modes de réalisation (ii) ci-dessus, les anticorps sont choisis 30 parmi les anticorps polyclonaux et les anticorps monoclonaux, y compris les anticorps monoclonaux recombinants. La présente invention concerne également sur des procédés mettant en oeuvre le dispositif selon l'invention et qui seront présentés en détails dans la description, à savoir : - un procédé pour identifier un profil d'expression d'une combinaison de gènes cibles (encore désigné « signature » ou « signature d'expression ») permettant de déterminer, ou au moins d'évaluer, un état de stimulation des défenses naturelles de plantes ; - un procédé pour déterminer ou évaluer l'état de stimulation des défenses naturelles de plantes ou d'une partie de telles plantes ; - un procédé pour sélectionner une substance ayant la propriété de moduler l'état de stimulation des défenses naturelles d'un plant ou d'une partie de plant , - un procédé pour sélectionner une plante ou partie de plante, présentant un état de stimulation des défenses naturelles susceptible de leur conférer une résistance améliorée à au moins un stress biotique et/ou abiotique d'intérêt. Chacun de ces dispositifs est tout particulièrement adapté pour une mise en oeuvre sur des plantes ou parties de plantes appartenant à la famille des Rosaceae. Tel que divulgué ci-après, la présente invention fournit donc un nouveau dispositif ou outil pour déterminer et/ou étudier l'état de stimulation des défenses naturelles de plantes, qui utilise pour cela la détermination du profil d'expression et/ou la détection du profil d'expression et/ou la quantification du niveau d'expression d'une combinaison de gènes cibles dans un échantillon de plante ou de partie de plante. Les inventeurs ont ainsi identifié un ensemble de gènes cibles contenus dans le génome de plante qui constituent des marqueurs biologiques aptes à servir d'indicateurs dans l'étude et/ou la détermination de la présence et/ou du niveau et/ou de l'intensité de l'état de stimulation des défenses naturelles d'une plante ou d'une partie de plante. Les inventeurs ont montré que le dispositif selon l'invention permet, avec un nombre limité et déterminé de marqueurs, de déterminer et/ou d'étudier l'effet d'un composé ou d'une composition d'intérêt et/ou d'un stress biotique et/ou d'un stress abiotique, sur l'état de stimulation des défenses naturelles de plantes ou parties de plantes traitées. Il s'avère que ce dispositif selon l'invention est en particulier intéressant pour l'étude des plantes ou des parties de plantes du genre des Rosaceae ou Rosacées, comme cela est illustré dans les exemples. Après avoir défini certains termes, la présente divulgue les gènes cibles spécifiquement sélectionnés pour l'étude et/ou la détermination de l'état de stimulation des défenses naturelles des plantes ou parties de plantes, puis décrit le dispositif selon l'invention avec les moyens pour mesurer et/ou déterminer le niveau ou profil d'expression desdits gènes cibles respectifs. Un tel dispositif présente de nombreuses applications qui seront également développées ci-après, notamment (i) la sélection et l'étude de composés ou de compositions qui sont aptes à modifier l'état de stimulation 1 o des défenses naturelles de plantes ou de parties de plantes et/ou (ii) la sélection de plantes ou de parties de plantes présentant ou étant aptes à présenter un état particulier de stimulation des défenses naturelles, par exemple suite à l'application d'un composé ou d'une composition d'intérêt et/ou d'un stress biotique et/ou d'un stress abiotique. 15 Définition Par « plante », on entend tout organisme pluricellulaire appartenant au sous-règne des Tracheobionta, comprenant les ptéridophytes et les 20 spermaphytes. Par « spermaphytes », on entend un organisme appartenant aux gymnospermes ou de préférence encore aux angiospermes. Parmi les angiospermes, on entend les monocotylédones ou encore les dicotylédones, et de préférence encore les eudicotylédones. Par « dicotylédones », on entend les sous-classes suivantes : Asteridae, Caryophyllidae, Dilleniidae, 25 Hamamelidae, Hamamelididae, Magnoliidae ou Rosidae. Par « Rosidea », on entend les ordres suivants : Apiales, Celastrales, Corna/es, Euphorbiales, Fabales, Geraniales, Haloragales, Linales, Myrtales, Podostemales, Polygalales, Proteales, Rafflesiales, Rhamnales, Rhizophorales, Rosales, Santalales, Sapindales. Dans l'ordre des Rosidea, on choisit encore de 30 préférence une plante de la famille des Rosaceae, y compris les pommiers. Par « échantillon », on entend un échantillon biologique contenant le matériel biologique permettant de détecter l'expression de la combinaison de gènes cibles. Le matériel biologique peut comprendre notamment des protéines 35 et/ou des acides nucléiques tels que notamment les acides désoxyribonucléiques (ADN) ou les acides ribonucléiques (ARN). Ce matériel biologique comprend du matériel spécifique des gènes cibles, tel que notamment les ARNm transcrits par les gènes cibles ou les protéines issues de ces ARNm, mais peut comprendre également du matériel non spécifique des gènes cibles, tels que notamment les ARNm transcrits par les gènes autres que les gènes cibles ou les protéines issues de ces ARNm. Selon un mode de réalisation de l'invention, le matériel biologique comprend des ARN, et encore plus préférentiellement des ARN totaux ; les ARN totaux comprennent les ARN de transfert, les ARN messagers (ARNm), tels que les ARNm transcrits par les gènes cibles mais également transcrits par tout autre gène, et les ARN ribosomaux. Les échantillons biologiques englobent des fragments de tissus prélevés sur la plante, ainsi que les produits résultant de l'extraction ou la purification des acides nucléiques (ADN, ARNm) ou des protéines contenus dans lesdits fragments de tissus, ainsi que certains produits de transformation des substances contenues dans lesdits fragments de tissu ou dans lesdits produits de transformation, par exemple les acides nucléiques du type ADNc obtenus par transcription inverse des acides nucléiques du type ARNm. Par « partie de plante », on entend le fragment d'une plante contenant au moins une cellule de plante, par exemple un organe de plante (tel qu'une feuille, un bourgeon, une fleur, une racine, un fruit, une graine ou partie de ceux-ci) ou un tissu de plante (tel qu'un méristème). Par « stress environnementaux », on désigne l'ensemble des facteurs extérieurs à une plante susceptible d'affecter le métabolisme normal de cette plante et d'induire chez elle une réaction d'adaptation et/ou de défense. Les stress environnementaux peuvent provenir d'être vivants (il s'agit de stress biotique), ou de facteurs autres (on parle alors de stress abiotique). Les stress biotiques regroupent notamment l'ensemble des agents pathogènes microbiens, tels que les agents pathogènes fongiques, bactériens, viraux ou ravageurs, et les infections ou infestations dont ils sont responsables. Les stress abiotiques regroupent l'ensemble des stress de nature physique ou chimique, et notamment les stress oxydatifs ou climatiques ; il s'agit notamment des stress hydriques, comme le manque d'eau, ou les stress thermiques comme le froid ou la chaleur. Les stress oxydatifs regroupent l'ensemble des stress aboutissant à l'augmentation de la concentration d'agents oxydants dans une plante ou une partie de plante. Par « état de stimulation de défenses naturelles », on entend le développement d'un ensemble de modifications biologiques qui confèrent à cette plante (i) une résistance immédiate, notamment LAR ou SAR, et/ou (ii) une pré-sensibilisation du type potentialisation grâce à laquelle elle devient capable de réagir plus efficacement à un stress ultérieur, biotique ou abiotique. L'« état de stimulation de défenses naturelles » se réfère également au statut, activé ou non-activé, des différentes voies moléculaires impliqués dans les mécanismes de défenses naturelles. Par « état de stimulation de défenses naturelles », on entend encore la résistance au stress, c'est-à-dire différents niveaux de tolérance au stress, à savoir une faculté des plantes à faire face aux stress biotiques et/ou de stress abiotiques. La résistance au stress peut être classée selon différents niveaux : - sensibilité, - tolérance moyenne à un ou plusieurs agressions biotiques ou abiotiques, et - tolérance élevée ou résistance totale à une ou plusieurs agressions biotiques ou abiotiques. Par « état de stimulation de défenses naturelles », on entend en particulier la capacité d'une plante à résister aux maladies, c'est-à-dire différents niveaux de résistance et/ou de tolérance d'une plante aux maladies, y compris la sensibilité, la résistance moyenne et la résistance élevée ou une résistance totale à un ou plusieurs agents pathogènes. Elle peut correspondre à une modification des symptômes induits par des agents pathogènes de la maladie (tels que la fréquence et/ou la taille des lésions, etc.), ainsi que l'étendue de la colonisation des tissus par l'agent pathogène ou le pourcentage d'infection, par rapport à ceux observés dans les plantes témoins sensibles et cultivées avec des maladies identiques. La résistance à la maladie peut également être illustrée par une croissance plus élevée et/ou un rendement des plantes résistantes en comparaison des plantes sensibles lorsqu'elles sont cultivées sous la pression de la maladie. Les expressions « état de stimulation des défenses naturelles activé », « état de stimulation des défenses naturelles induit », « amélioration de la résistance au stress », « résistance accrue à la maladie » et « réaction de défense renforcée » se réfèrent en particulier à toute augmentation significative de la résistance au stress ou de la résistance aux maladies d'une plante ou de tissus végétaux, par rapport à un contrôle approprié tel qu'une plante non soumise à un produit SDN ou ce même stress ou cette même maladie. Par « état de stimulation des défenses naturelles activé », « état de stimulation des défenses naturelles induit », on se réfère encore à toute activation/induction des voies moléculaires impliqués dans les mécanismes de défenses naturelles dans une plante ou partie de plante soumise à un 1 o produit SDN ou un stress, par rapport à un contrôle approprié tel qu'une plante non soumise à ce même produit SDN ou ce même stress. Par exemple, par « état de stimulation de défenses naturelles », on entend notamment un état « résistant » ou « sensible » à E. amylovora responsable du feu bactérien 15 Par « détermination et/ou étude de l'état de stimulation des défenses naturelles », on entend aussi bien (i) la détermination et/ou l'étude de l'existence ou de l'absence d'une telle stimulation des défenses naturelles, que (ii) la détermination et/ou l'étude du niveau et/ou de l'intensité de cette stimulation des défenses naturelles. 20 Par « niveau d'expression d'une combinaison de gènes cibles » ou « profil d'expression d'une combinaison de gènes cibles », on entend tout paramètre ou marqueur biologique détectable, mesurable et/ou quantifiable, dans la plante ou partie de plante étudiée, qui correspond, directement ou indirectement, au niveau d'expression de chacun des gènes sélectionnés. 25 Les termes « niveau d'expression » incluent l'absence et/ou la présence et/ou une valeur représentative de la quantité d'ARN messagers (« ARNm » ou « mRNA ») transcrits à partir de l'ADN génomique correspondant aux gènes cibles sélectionnés. L'expression « niveau d'expression » inclut encore l'absence et/ou la 30 présence et/ou la valeur représentative de la quantité de protéines codées par les gènes cibles sélectionnés. Par « surexpression » ou « activation » d'un gène, on entend un niveau quantitatif d'expression du marqueur dudit gène qui est multiplié au moins par 3 par rapport à un niveau quantitatif de la référence, de préférence 35 encore au moins 4x, 5x, 10x, 20x, 30x ou plus. Par « sous-expression » ou « inactivation » ou « répression » d'un gène, on entend un niveau quantitatif d'expression du marqueur dudit gène qui est divisé au moins par 3 par rapport à un niveau quantitatif de la référence, de préférence au moins 4x, 5x, 10x, 20x, 30x ou plus, voire non détectable. Un niveau d'expression « constant » d'un gène correspond à un niveau quantitatif d'expression du marqueur dudit gène qui est compris dans un domaine délimité par une division par 3 et une multiplication par 3 dudit niveau quantitatif, par rapport au niveau quantitatif de la référence. 1 o Le niveau d'expression des marqueurs peut être « relatif », c'est-à-dire que la variation de niveau d'expression d'un ou de plusieurs gènes est comparée par rapport au niveau d'expression d'autres échantillons, après « normalisation » des niveaux d'expression en utilisant par exemple des gènes contrôle. 15 Le multiple de modulation d'expression de chacun des gènes cibles, en surexpression ou en sous expression, peut être mesurée en utilisant par exemple des moyens de détermination du type PCR quantitative, avantageusement en temps réel, comme illustré par les exemples. Les résultats peuvent être obtenus selon la méthode du AACt (Delta 20 Delta CT) qui fournit les expressions relatives des gènes de défense dans un échantillon donné par rapport à l'échantillon appelé « calibrateur » (par exemple un échantillon d'une plante ou partie de plante non traitée, ou encore par exemple un échantillon d'une plante ou partie de plante traitée), expressions normalisées par la moyenne géométrique des gènes de 25 référence de ces échantillons (Vandesompele et al., Genome Biol. 3(7) : research0034.1-0034.11, 2002 ; Livak et Schmittgen, Methods 25:402-408, 2001 ). Le niveau d'expression des marqueurs peut également être « absolu », c'est-à-dire que les niveaux d'expression des marqueurs se 30 référent à la quantité absolue desdits marqueurs (ARNm ou protéines) dans un échantillon. Selon l'invention, un « profil d'expression » ou une « signature d'expression » consiste en une représentation de l'ensemble des valeurs de niveaux d'expression de chacun des gènes cibles testés, pour la 35 combinaison de gènes cibles testée. Combinaison de gènes cibles utilisés dans le dispositif selon l'invention Le dispositif selon l'invention comprend des moyens pour déterminer et/ou étudier le niveau d'expression d'une combinaison établie de gènes cibles, ou autrement dit d« Les gènes TuA, Actin et GAPDH constituent des gènes marqueurs dont le niveau d'expression est indépendant de l'état de stimulation des défenses naturelles. Ces gènes sont ici cités uniquement à titre d'exemple. De tels gènes « rapporteurs » permettent de corriger le niveau d'expression déterminé pour chacun des gènes cibles. 1 o Dans la présente description, les appellations employées pour désigner chacun des gènes cibles correspondent à une appellation internationale reconnue, qui se retrouvent notamment dans les bases de données de séquences de gènes et de séquences de protéines, par exemple les bases UniGene proposées par le National Center for Biotechnology 15 Information (NCBI, Bethesda, MD, USA). Pour cela, on se réfère de préférence à la base de données UniGene Malus domestica Les gènes cibles en question sont encore définis respectivement par les séquences éditables à partir des numéros d'accession Unigene spécifiés dans le tableau 1. Les gènes cibles selon l'invention désignent également les « variants » ou « unigènes » ou allèles qui correspondent à ces séquences. Ces variants possèdent au moins 70%, 80%, 90%, 94%, 95%, 96%, 97%, 98%, 99% ou plus, d'identité en nucléotides avec les séquences précitées, préférentiellement par alignement de séquences sur toute leur longueur et comparaison de l'identité des bases après alignement. De tels gènes cibles « variants » peuvent être identifiés par différentes méthodes de la technique, telles que des techniques d'hybridation d'acides nucléiques (par exemple Southern blot, Northern blot, etc.), des méthodes 1 o basées sur les protéines (par exemple Western blot), des méthodes basées sur les techniques PCR, de séquençage, d'analyse bioinformatique (en utilisant par exemple un programme informatique du type FASTA ou BLAST, en utilisant les paramètres par défaut). Les gènes cibles « variants » sont de préférence des variants 15 fonctionnels, c'est-à-dire qu'ils codent pour des protéines ayant les mêmes fonctions biologiques, ou au moins des fonctions biologiques similaires, par rapport aux protéines issues des séquences précités. Les gènes cibles « variants » incluent également les gènes homologues ou orthologues, rencontrés de préférence dans les genres ou 20 les variétés de Rosacées autres que Malus domestica. Plus généralement, les gènes cibles « variants » incluent avantageusement également les gènes homologues ou orthologues qui se rencontrent dans toute autre plante, de préférence dans tout organisme appartenant au sous-règne des Tracheobionta, de préférence encore appartenant aux 25 spermaphytes, de préférence encore aux angiospermes, de préférence encore aux dicotylédones, et de préférence encore au Rosidea. Le terme « orthologue » ou « homologue » pour un gène ou une protéine se réfère ici au gène ou à la protéine homologue qui se trouve dans une autre espèce, présentant la même fonction que le gène ou la protéine 30 d'intérêt, mais (généralement) qui a divergé(e) en séquence à partir du moment où les espèces comportant lesdits gènes ont divergées (les gènes ont évolué à partir d'un ancêtre commun par spéciation). De tels gènes orthologues peuvent ainsi être identifiés dans d'autres espèces végétales par technique de comparaison de séquences (par exemple basés sur des pourcentages d'identité de séquences sur la séquence entière ou sur des domaines spécifiques) et / ou d'analyse fonctionnelle. De tels gènes orthologues ont par exemple été identifiés chez d'autres genres de la famille des Rosacées. Le tableau 2 ci-après précise le numéro d'accession dans la base de données GenBank proposée par le National Center for Biotechnology Information (NCBI, Bethesda, MD, USA), de chacun des gènes orthologues identifiés. 1 o Tableau 2 : Gènes ortholoques pour les gènes cibles selon l'invention N° Nom du gène Orthologue Orthologue Orthologue Orthologue chez chez les chez les Prunus chez les Pyrus chez les Rosa Fragaria 1 PR-1 DV440399 DN556381 AF195235 EC586767 GE653251 2 PR-2 EX682264 DN554095 AJ504892 EC587362 3 PR-4 EX657003 CB823353 - - 4 PR-5 DY668082 GE653177 FK939207 B1977710 EX674853 5 PR-8 DY672350 CV051978 AJ504863 B1977412 CV052812 6 PR-14 DY673738 AM290861 AF195216 EC589716 7 PR-15 DY673400 GR410635 - EC586210 8 PAL C0817421 CVO46544 - - EX684393 9 CHS A1795154 CB820023 FK939234 CF349759 DY667960 FE969272 DFR DY672493 CVO46853 DB999982 - EX661062 CB819555 11 ANS CX661854 BUO39495 FK939239 B1977949 12 PP0 DY667415 CVO45870 AJ504916 - EX674603 13 HMGR DY669718 AM290185 - BQ106200 EX659154 FC861452 14 FPPS DY669331 DY644308 - BQ104581 EX660570 Far DY675841 DY646265 - CF349900 16 CSL C0817796 AJ533335 - - BU047350 17 APDX CX661243 CVO45878 G R957944 EC586214 CX661894 G E653243 B I978785 18 GST DV438230 CB820780 DB999954 EC587514 DV438954 19 PDX DY676157 DW341091 DC993457 EC586635 DY670759 GR410510 CaIS EX687641 DY633833 DC993380 B0104579 21 Pect DY666714 BU044880 - B0104257 22 CAD CX662236 EE488909 DV440820 CF349542 N° Nom du gène Orthologue Orthologue Orthologue Orthologue chez chez les chez les Prunus chez les Pyrus chez les Rosa Fragaria 23 EDS1 DY673255 DY652698 - CF349463 FC866180 24 WRKY EX687984 AJ873733 - - 25 LOX2 DY674691 BU046906 - CF349741 26 JAR DY667416 FC864077 - - 27 ACCO CX662198 AJ833064 DB999960 EC588379 EX670124 28 EIN3 DY666956 EE488205 - - 29 TuA DY671340 BU042671 - BQ106089 DY674254 BQ105408 30 Actin DY668010 DY650839 - BQ104395 EX688327 CVO44868 B1977396 31 GAPDH DY667270 DW357797 - B1978153 DY667095 DW350728 BQ104075 Les gènes cibles selon l'invention sont également définis par les séquences SEQ ID n°1 à 28 qui correspondent à leurs ADNc respectifs, ou par les variants desdits séquences selon la définition ci-dessus. Les séquences correspondantes sont également consultables sur la base de données GenBank (NCBI), au moyen des numéros d'accession précisés dans le tableau 1. Pour la notion de « variant », on peut se référer aux définitions développées ci-dessus. 1 o Les gènes cibles selon l'invention sont encore désignés par les protéines qu'ils codent respectivement. Les séquences peptidiques correspondants aux gènes cibles sont précisées par exemple sur la base de données UniGene Malus domestica, et peuvent être obtenues au moyen des numéros d'accession précisés dans le 15 tableau 1. Selon un mode de réalisation préféré, le dispositif selon l'invention comporte des moyens pour déterminer et/ou étudier le niveau d'expression d'au moins deux gènes dans chacun des groupes (a), (b), (c), (e), (f), (g), (h) et (i) précités. 20 Ce mode de réalisation préféré offre notamment les avantages suivants : - si les gènes cibles d'un même groupe sont co-régulés (c'est surtout le cas des gènes des voies de signalisation qui sont souvent activés de manière transitoire), ils peuvent avoir une expression séquentielle, et le fait d'en choisir un seul augmente le risque de conclure à une absence de modulation de cette voie (si les prélèvements ne sont pas effectués au bon moment pour un gène donné) ; - si les gènes cibles d'un même groupe sont non co-régulés (c'est particulièrement le cas des protéines PR, ainsi que des enzymes de la voie des phénylpropanoïdes, pour le gène PPO d'une part, PAL d'autre part, et enfin le groupe CHS, DFR et ANS), il devient alors arbitraire de n'en choisir qu'un ; - il permet de suivre les expressions de plusieurs gènes cibles dans chaque 1 o groupe, la redondance d'information sur le niveau d'expression de plus d'un gène cible appartenant à un groupe donné accroissant encore la fiabilité des résultats. Plus précisément, parmi les gènes cibles ci-dessus, le dispositif selon l'invention permet avantageusement l'étude et/ou l'analyse de l'expression 15 de l'une au moins des combinaisons suivantes de gènes : - pour le groupe (a), l'un au moins des gènes suivants : PR-1, PR-2, PR-4 ou PR-8, combiné avec l'un au moins des gènes suivants PR-5, PR-14 ou PR-15 - pour le groupe (b), le gène PAL, et l'un au moins des gènes suivants : CHS, 20 DFR ou ANS, et le gène PPO, - pour le groupe (c), l'un au moins des gènes suivants : HMGR et/ou Far, et le gène FPPS, - pour le groupe (e), le gène APDX et l'un au moins des gènes suivants : GST et/ou PDX. 25 Selon un mode de réalisation préféré, la combinaison de gènes cibles étudiée dans le dispositif selon l'invention est la suivante : PR-1, PR-2, PR-4, PR-5, PR-8, PR-14, PR-15, PAL, CHS, DFR, ANS, PPO, HMGR, FPPS, Far, CSL, APDX, GST, PDX, CaIS, Pect, CAD, EDS1, WRKY, LOX2, JAR, ACCO et EIN3. 30 Dispositif selon l'invention, et moyens pour déterminer et/ou étudier le niveau d'expression d'une combinaison de gènes cibles selon l'invention Caractéristiques générales du dispositif selon l'invention La présente invention englobe le dispositif ou l'outil, avantageusement sous la forme d'une trousse ou d'un « kit », pour déterminer et/ou étudier l'état de stimulation des défenses naturelles dans un échantillon de plantes ou de parties de plantes, en particulier de plants de Rosaceae et en particulier encore de plants de pommier. De tels dispositifs de détection et de quantification s'appuient sur la préparation d'un mélange réactionnel destiné à contenir les marqueurs biologiques d'intérêt et les réactifs spécifiques appropriées, cela dans des conditions adaptées et pendant un temps suffisant pour permettre au marqueur et son réactif spécifique d'interagir et de se lier, et ainsi former un complexe qui peut être retiré et/ou détecté dans ledit mélange réactionnel. Le dispositif selon l'invention contient pour cela des moyens adaptés pour détecter tout marqueur biologique détectable, mesurable et/ou quantifiable, dans la plante ou partie de plante étudiée, qui correspond, directement ou indirectement, au niveau d'expression de chacun des gènes sélectionnés. Selon un mode de réalisation préféré, les acides nucléiques (par exemple ARNm ou ADNc) ou les polypeptides constituent les marqueurs d'expression de chacun des gènes cibles d'intérêt. La méthode de détection du dispositif conforme à l'invention est alors basée avantageusement sur la détection d'ARNm, d'ADNc et/ou de protéines marqueurs, dans l'échantillon. Les moyens de détection comprennent ainsi avantageusement des réactifs ou ligands ou agents ou composés ou compositions comprenant, ou consistant en, un ensemble de réactifs spécifiques, chacun d'eux étant capable de se lier spécifiquement avec un marqueur biologique d'intérêt, avantageusement du type acide nucléique ou du genre protéine, qui est représentatif du niveau d'expression de l'un des gènes cibles. Les réactifs adaptés pour se lier avec des marqueurs du type acide nucléique, en particulier un ARNm ou un ADNc, incluent les acides nucléiques de séquences complémentaires. Par exemple, des réactifs adaptés pour détecter/quantifier des acides nucléiques marqueurs peuvent inclure (i) des oligonucléotides (marqués ou non marqués) fixés à un support, (ii) des oligonucléotides marqués non fixés avec un support, (iii) une paire d'amorces pour une technique PCR ou similaire. Des réactifs adaptés pour détecter/quantifier des protéines marqueurs 1 o incluent les anticorps, les dérivés d'anticorps, les fragments d'anticorps ou similaires. La trousse ou le kit selon l'invention contient encore tout composé additionnel approprié, utile pour la mise en oeuvre de l'invention. Par exemple, le dispositif peut contenir des fluides ou milieux pour 15 l'hybridation d'acides nucléiques complémentaires ou pour la fixation d'un anticorps avec une protéine. De manière générale, les dispositifs en question comprennent par exemple plusieurs réactifs spécifiques qui sont capables de détecter l'expression des gènes cibles selon l'invention, qui peuvent être associés 20 avec des échantillons contrôle, des plaques de microtitration, des tubes Eppendorf, un mode d'emploi, etc. Les éléments constitutifs du dispositif selon l'invention sont présentés plus en détails ci-après. 25 Moyens pour déterminer le niveau d'expression des gènes cibles dans le dispositif selon l'invention Le dispositif selon l'invention comporte donc des moyens pour quantifier et/ou déterminer l'expression des gènes cibles précités. 30 Ainsi, tout moyen pour détecter et/ou quantifier un acide nucléique ou une protéine dans un échantillon biologique peut être ici employé. En l'occurrence, les moyen de détermination du niveau ou du profil d'expression de chaque gène cible sont choisis avantageusement parmi : (i) les fragments d'acide nucléique, sélectionnés parmi ceux capables de 35 s'hybrider de manière spécifique aux ARNm exprimés par chacun des gènes cibles ou aux ADNc correspondants, ou à des fragments desdits ARNm ou desdits ADNc, et/ou (ii) les anticorps, sélectionnés parmi ceux aptes à se lier spécifiquement aux produits d'expression de chacun des gènes cibles, desdits ARNm ou desdits ADNc, ou aux fragments desdits produits d'expression, c'est-à-dire en particulier une protéine ou un polypeptide. En pratique, la quantification du niveau d'expression de chaque gène cible comprend les étapes suivantes : (a) la préparation d'un échantillon d'acides nucléiques (ARNm et/ou ADNc) ou de protéines, à partir d'une plante ou d'une partie de plante, et (b) l'hybridation des ARNm/ADNc et/ou des protéines de l'échantillon préparé, avec des moyens de détermination comprenant un ou plusieurs réactifs de référence (polynucléotides du type sonde(s) ou amorce(s), ou anticorps notamment) contenus dans le dispositif selon l'invention. L'échantillon d'acides nucléiques et/ou de protéines peut être obtenu à partir d'une partie de la plante (par exemple une feuille, racines, etc.), ou de la plante entière (par exemple semences ou jeunes plants), ou d'une pluralité de plantes ou de parties de plantes, tel qu'un lot de plantes ou de feuilles. Ainsi, dans un premier temps, des parties de plantes sont prélevées, et éventuellement mises en commun, avant les étapes d'isolation de l'échantillon d'acides nucléiques ou de protéines, ou les étapes de détection. L'échantillon d'acides nucléiques ou de protéines est de préférence extrait des cellules, par exemple en utilisant des méthodes standard d'extraction des acides nucléiques ou de protéines. Des extraits bruts ou des échantillons de tissus bruts, comme par exemple les tissus végétaux homogénéisés, peuvent aussi être utilisés comme échantillon d'acides nucléiques ou de protéines, dans lequel les marqueurs transcrits ou les marqueurs protéines sont détectés et/ou quantifiés. A partir de l'échantillon préparé, le dispositif selon l'invention permet de quantifier le niveau d'expression en ARNm (ou des ADNc correspondants) ou en protéines spécifiques, correspondant aux gènes cibles précités. Selon un mode de réalisation préféré, le dispositif selon l'invention est adapté pour étudier l'expression de gènes cibles sur la base de marqueurs du type nucléiques. Dans ce cas, le dispositif peut être réalisé sous la forme d'une puce à ADN, désignée encore par les appellations de puce à gènes ou biopuce, ou par les termes « DNA chip », « DNA-microarray » ou « biochip ». L'échantillon d'acides nucléiques est de préférence un échantillon d'ARNm ou d'ARN total ou d'ADNc. Les ADNc peuvent être, de manière optionnelle, amplifiés par l'utilisation de toute méthode basée sur les réactions de polymérisation en chaîne, avant hybridation avec le ou les polynucléotides de référence ; de manière alternative, ces ADNc ne sont pas amplifiés. Pour l'évaluation du niveau de transcription des gènes cibles en question, les moyens de détermination peuvent par exemple être basés sur (i) les méthodes d'amplification du type PCR quantitative, de préférence la méthode de RT-PCR quantitative, ou (ii) les méthodes d'hybridation d'acides nucléiques, par exemple sous forme de puces à ADN ou « hybridation microarray ». La PCR quantitative (qPCR ou QPCR) peut être réalisées par des techniques et équipements conventionnels, bien connu de l'homme du métier, décrit par exemple dans S.A. Bustin (Ed.), et al., A-Z of Quantitative PCR, IUL Biotechnology series, n°5, 2005. Une méthode possible est la PCR quantitative avec transcription inverse ou RT-qPCR (voir Czechowski et al., 2004, Plant J. 38, 366-379 ; Czechowski et al. 2005, Plant Physiol. 139, 5-17 ; Vandesompeleet al., 2002, Genome Biol. 3(7):research0034.1-0034.11). Cette technique de mesure permet la détection d'un niveau relatif ou absolu d'expression de l'ARNm des gènes cibles dans l'échantillon. Un tel dispositif employant une technique de qPCR est décrit plus en détail par la suite, et une application pratique est présentée dans les exemples. De manière alternative, la détermination est classiquement obtenue par la mise en contact de l'échantillon d'acides nucléiques avec un support sur lequel sont fixés une pluralité de polynucléotides comportant des séquences complémentaires (par exemple au moins 7, 10, 15, 20, 25, 30, 40, 50, 100, 500 ou plus résidus ou bases nucléotidiques) à la séquence de chacun des acides nucléiques ou polynucléotides marqueurs. Ces polynucléotides fixés comportent une séquence possédant une spécificité d'hybridation dans des conditions déterminées pour former un complexe d'hybridation avec le marqueur nucléique d'un gène cible. Selon la présente invention, le marqueur spécifique du gène cible peut être (i) une séquence nucléotidique comprise dans un ARN messager issu du gène cible (on parle alors d'ARNm spécifique du gène cible), (ii) une séquence nucléotidique comprise dans un ADN complémentaire obtenu par 1 o transcription inverse dudit ARN messager (on parle alors d'ADNc spécifique du gène cible), ou encore (iii) une séquence nucléotidique comprise dans un ARN complémentaire obtenu par transcription dudit ADNc tel que décrit précédemment (on parlera alors d'ARNc spécifique du gène cible). Si les différents polynucléotides marqueurs fixés sont détectables 15 indépendamment sur un même support (par exemple par l'utilisation de différents chromophores ou fluorophores, ou fixés à différentes positions sélectionnées dudit support), les niveaux d'expression d'une pluralité de marqueurs peuvent être étudiés simultanément sur ce support unique. Des méthodes appropriées pour la détection et la quantification par 20 biopuces à polynucléotides fixés sont décrites dans l'état de la technique et peuvent par exemple être trouvées dans : Applications of DNA Microarrays in Biology. R.B. Stoughton (2005), Annu. Rev. Biochem. 74:53-82, ou dans David Bowtell and Joseph Sambrook, DNA Microarrays : A Molecular Cloning Manual, Cold Spring Harbor Laboratory Press, 2003 ISBN 0-870969- 25 625-7. Pour construire une telle puce à ADN fixé, des molécules d'acide nucléique sont attachées à un support solide à des endroits connus ou « addresses ». Les molécules d'acide nucléique fixées sont complémentaires aux 30 séquences nucléotidiques selon l'invention, et en particulier aux séquences SEQ ID N°1 à 28, et l'emplacement de chaque acide nucléique sur la puce est connu. Ces puces avec polynucléotides fixés peuvent, par exemple, être réalisées en utilisant des méthodes (i) de dépôt de sondes pré-synthétisées, 35 (ii) de synthèse in situ ou (iii) de photolithographie. Les méthodes pour générer des polynucléotidiques marqués et pour l'hybridation à ces puces à ADN sont bien connues dans l'art antérieur (voir par exemple US 2002 / 0144307, et Ausubel et al., Eds. (1994) Current Protocols in Molecular Biology, Current Protocols (Greene Publishing Associates, Inc, et John Wiley & Sons, Inc, New York, 1994 Supplement)). Dans le dispositif selon l'invention, l'hybridation entre deux acides nucléiques est avantageusement mise en oeuvre dans des conditions d'hybridation stringentes. Selon un mode de réalisation complémentaire ou alternatif, le 1 o dispositif selon l'invention est adapté pour étudier l'expression de gènes cibles sur la base de marqueurs du type protéines. Dans ce cas, les moyens de détermination peuvent par exemple être basés sur des techniques employant : (i) des anticorps (radio-marqués, marqués avec un chromophore, avec un fluorophore ou une chaîne 15 polymère, ou une enzyme), (ii) des dérivés d'anticorps (par exemple un anticorps conjugué avec un substrat ou avec une protéine ou avec un ligant d'une paire de protéines ligants (par exemple biotine - streptavidine), ou (iii) des fragments d'anticorps (par exemple un anticorps simple chaîne, un domaine d'anticorps isolés, etc.) qui se lient spécifiquement avec une 20 protéine marqueur ou un fragment de celle-ci, ou éventuellement une protéine marqueur qui a subit tout ou partie de ces modifications normales post-traductionnelles. Le niveau d'expression, obtenu par la mise en oeuvre du dispositif selon l'invention, peut être exprimé avec une unité arbitraire qui reflète la 25 quantité d'ARN messager transcrit pour chaque gène d'intérêt, tel que l'intensité d'un signal radioactif ou fluorescent émis par le matériel ADNc généré par une analyse PCR du contenu en ARN messager de l'échantillon étudié, incluant des techniques d'analyse PCR en temps réel de l'ARN messager contenu dans l'échantillon. 30 De manière alternative, ce niveau d'expression peut être exprimé en une unité arbitraire qui reflète la quantité de protéines marqueurs qui est détectée dans l'échantillon étudié, tel qu'une intensité d'un signal radioactif ou fluorescent émis par un anticorps marqué spécifique de la protéine d'intérêt. Encore de manière alternative, la valeur obtenue peut consister en une concentration de protéines d'intérêt qui peut être mesurée par diverses méthodes de détection des protéines connues de l'art antérieur, tel que ELISA, MALDI-TOF (pour « Matrix-Assisted Laser Desorption Ionisation Time-Of-Flight »), SALDI-TOF (pour « Surface-Assisted Laser Desorption lonization Time-Of-Flight ») ou Western Blot. Toujours de manière alternative, cette valeur de l'expression des gènes peut être exprimée comme une unité arbitraire relative, corrigée par le niveau d'expression d'un ou plusieurs gènes de référence dits « rapporteurs ») qui ne sont pas modifiés dans l'échantillon par l'état de stimulation des défenses naturelles. Dans ce dernier cas, la valeur de l'expression de chaque gène cible peut être exprimée comme la différence (deltaCT) entre (i) la quantité d'un ARNm ou d'une protéine formant marqueur biologique et (ii) la quantité d'un ARNm ou d'une protéine non marqueur, présent dans l'échantillon choisi par exemple parmi les gènes correspondant à la tubuline, l'actine, la GAPDH ou l'ubiquitine. Pour cela, on peut encore se référer aux documents suivants : Livak et al. (2001, Methods 25:402-408) ou Vandesompele et al. (2002, Genome Biol. 3(7): research0034.1-0034.11). Deux dispositifs préférés sont détaillés ci-après, sans toutefois constituer une limitation dans les techniques susceptibles d'être employées pour le dispositif selon l'invention. Quantification biologique de transcrits marqueurs, par amplification d'acides nucléiques Le dispositif selon l'invention comprend avantageusement des moyens pour déterminer le niveau d'expression de la combinaison précitée de gènes cibles, par amplification d'acides nucléiques transcrits (ARNm ou ADNc) dans le cadre d'une technique dite de PCR quantitative. La réaction de polymérisation en chaîne (PCR ou « Polymerase Chain Reaction ») est une méthode hautement efficace pour une telle quantification d'acides nucléiques constituant marqueurs biologiques. Pour mettre en oeuvre de telles amplifications d'acides nucléiques dans un objectif de quantification des marqueurs biologiques d'intérêt, les moyens de détermination selon l'invention comprennent un ensemble de paires d'amorces, chaque paire d'amorces étant aptes à se fixer et à amplifier spécifiquement avec une cible ARNm ou avec une cible ADNc. Selon cette technique, les ARN totaux sont extraits et purifiés et les ARN messager contenus dans l'extrait sont avantageusement convertis dans un premier temps en ADN complémentaires (ADNc), à l'aide d'une transcriptase inverse. 1 o Une paire d'amorces apte à s'hybrider spécifiquement avec chacun des acides nucléiques marqueurs peut être dessinée par toute méthode appropriée, connue de la technique. Les deux amorces sont respectivement choisies sur les brins sens et antisens, de manière à permettre l'amplification d'un fragment d'ADN. 15 Des paires d'amorces dégénérées ou spécifiques pour l'amplification des acides nucléiques SEQ ID n°1 à 28 (ou d'une partie ou d'un variant de ces séquences) peuvent être synthétisées à partir desdites séquences, ou des variants desdites séquences. Avantageusement les amorces sens et anti-sens comprennent au 20 moins 15 nucléotides et présentent une identité d'au moins 80 %, préférentiellement 90 %, et encore préférentiellement 95 %, et encore de préférence 100%, avec la séquence des gènes cibles, ou avec sa séquence complémentaire, ou avec les ADNc précités. Des exemples de telles amorces spécifiques à chacune des 25 séquences SEQ I D n °1 à 28 sont désignés par les séquences SEQ I D n°32 à 87 (tableau 3 dans la partie Exemple). De plus, des exemples d'amorces spécifiques des gènes de référence SEQ I D n°29 à 31 sont désignés par les séquences SEQ I D n°88 à 93 (tableau 3). Les moyens de détermination comportent encore des polymérases, 30 préférentiellement la Taq polymérase, mais cela peut être toute autre enzyme présentant une activité polymérase et utilisable dans les conditions opératoires de la PCR. Au cours de la réaction d'amplification, le produit de la réaction, désigné encore sous l'appellation amplimère ou amplicon, est détecté. La quantité d'ARNm transcrits pour chaque gène cible est mesurée par des moyens autorisant la mise en oeuvre de la méthode dite de PCR quantitative ou QPCR. La PCR quantitative permet la quantification d'une quantité initiale d'ADN, d'ADNc ou d'ARN dans l'échantillon préparé. Elle est pour cela basée sur la détection d'un composé rapporteur fluorescent dont l'intensité de signal augmente lorsque le produit de la PCR s'accumule avec chaque cycle d'amplification. Les moyens de détermination comportent ainsi des composés 1 o rapporteurs fluorescents, c'est-à-dire des composés qui se lient à l'ADN double brin (par exemple dans le cas d'une technique SYBR Green I) ou des sondes spécifiques (par exemple dans le cas d'une technique TagMan®, d'une technique HybProbes (FRET) ou hybridation de 2 sondes, d'une technique Molecular Beacons ou balises moléculaires, et d'une technique 15 Scorpion ou amorces scorpion). Pour mettre en oeuvre cette technique PCR dans le cadre de la présente invention, on peut se référer aux revues générales sur les techniques PCR et aux instructions des fabricants et distributeurs de réactifs et de thermocycleurs, et en particulier à la notice explicative intitulée 20 « Quantitation of DNA/RNA Using Real-Time PCR Détection » publiée par Perkin Elmer Applied Biosystems (1999) et au PCR Protocols (Académie Press New-York 1989). On peut encore employer les informations développées notamment dans les documents suivants : Livak et al. (2001, Methods 25:402-408) et 25 Vandesompele et al. (2002, Genome Biot. 3(7):research0034.1-0034.11). L'un des avantages de la méthode de détection par QPCR est que l'analyse des produits de PCR se fait directement au cours des cycles de PCR, par la lecture de la fluorescence obtenue au cours des cycles. Il n'est donc pas nécessaire de travailler avec les produits de PCR, qui constitue un 30 risque de contamination pour les analyses ultérieures. Cette détection a lieu avantageusement en pleine phase exponentielle de PCR et non en point final ; ce principe de détection est donc plus sensible et plus spécifique. En outre la quantification du nombre de cibles initiales dans la réaction est très fiable et reproductible. La détection du produit de PCR se fait au 35 cours des cycles PCR. Un mode de réalisation particulier pour la quantification de tels marqueurs biologiques, sur la base d'un dispositif mettant en oeuvre une technique de quantification par amplification, est divulgué dans les exemples ci-après. Quantification biologique de protéines marqueurs Selon un autre mode de mise en oeuvre de l'invention, les moyens de détermination des niveaux d'expression des gènes cibles comprennent des 1 o moyens de mesure de la quantité de protéines marqueurs, ou de fragments des protéines marqueurs, présente dans l'échantillon préparé. Pour cela, les moyens de détermination correspondants comprennent avantageusement une combinaison ou un jeu d'anticorps, chaque anticorps étant dirigé spécifiquement à l'encontre d'une protéine ou d'un fragment de 15 protéine, constituant un marqueur représentative de l'expression de l'un des gènes cibles précités selon l'invention. Les anticorps en question peuvent être polyclonaux, ou de préférence monoclonaux. On peut employer des anticorps intacts, ou en fragments ou dérivés 20 de tels anticorps (par exemple Fab ou F(ab')2). Une variété de technique peut être employée pour déterminer et/ou quantifier un marqueur biologique du type protéine, au moyen d'un anticorps donné. Par exemple, de tels techniques incluent, mais de manière non 25 limitative, les radioimmuno-essais (« Radioimmunoassay » ou RIA), les essais immunoradiométriques (« Immunoradiometric assay » ou IRMA), les essais enzymoimmunologiques (« Enzymoimmunoassay » ou EIA), les essais immunoenzymatiques (« Enzyme-labeled immunosorbent assay » ou ELISA), les essais immunofluorométriques (« Fluoroimmunoassay » ou FIA, 30 ou « immunofluorometric assay » ou IFMA), les essais immunoluminométriques (« Luminoimmunoassay » ou LIA, ou « Immunoluminometric assay » ou IFLA), ou les analyses Western blot. Pour l'obtention des anticorps et la mise en oeuvre des techniques ELISA et radioisotopique notamment, on peut se reporter au manuel 35 « Antibodies, A Laboratory Manual » (Cold Spring Harbor Press (1988)). L'homme du métier peut tout-à-fait adapter les méthodes de détection et/ou de quantification connues protéines/anticorps, pour une utilisation avec le dispositif selon l'invention. Plante ou partie de plante étudiée au moyen du dispositif selon l'invention Le dispositif selon l'invention s'avère en particulier intéressant pour l'étude de plantes, ou de parties de plantes, appartenant à la famille des 1 o Rosaceae ou Rosacées. Ce dispositif sera en particulier intéressant pour étudier des plantes, ou parties de plantes, choisies parmi l'une des sous-familles suivantes : les Amygdaloideae (famille du pêcher), les Maloideae (famille du pommier), les Rosoideae (famille du rosier) et les Spiraeoideae (famille de la spirée). 15 Plus précisément encore, le dispositif selon l'invention sera intéressant pour étudier des plantes, ou parties de plantes, choisies parmi l'un des genres suivants : Acaena, Adenostoma, Agrimonia, Alchemilla, Amelanchier, Aphanes, Aremonia, Aria, Aruncus, Bencomia, Brachycaulos, Cercocarpus, Chaenomeles, Chamaebatia, Chamaebatiaria, Chamaemeles, 20 Chamaemespilus, Chamaerhodos, Cliffortia, Coleogyne, Coluria, Cormus, Cotoneaster, Cowania, Crataegus, Cydonia, Dalibarda, Dichotomanthes, Docynia, Docyniopsis, Dryas, Duchesnea, Eriobotrya, Eriolobus, Exochorda, Fallugia, Fil/pendula, Fragaria, Geum, Gillenia, Guamatela, Hagenia, Hesperomeles, Heteromeles, Holodiscus, Horkelia, Horkeliella, Ives/a, 25 Kageneckia, Kelseya, Kerria, Leucosidea, Lindleya, Luetkea, Lyonothamnus, Maddenia, Malacomeles, Malus, Margyricarpus, Mespilus, Neillia, Neviusia, Nuttalia , Oemleria, Orthurus, Osteomeles, Pentactina, Peraphyllum, Petrophytum, Photinia, Physocarpus, Polylepis, Potanina, Potentilla, Poterium, Prinsepia, Prunus, Pseudocydonia, Purshia, Pyracantha, Pyrus, 30 Quillaja, Rhaphiolepis, Rhodotypos, Rosa, Rubus, Sanguisorba, Sarcopoterium, Sibbaldia, Sibiraea, Sorbaria, Sorbus, Spenceria, Spiraea, Spiraeanthus, Stephanandra, Taihangia, Tetraglochin, Torminalis, Vauquelinia, Waldsteinia, Xerospiraea. De préférence, le dispositif selon l'invention est adapté pour étudier 35 des plantes, ou parties de plantes, appartenant à l'une des espèces suivantes : Prunus armeniaca, Prunus dulcis, Prunus avium, Cydonia oblonga, Rosa canina, Fragaria, Rubus idaeus, Rubus fruticosus agg, Mespilus germanica, Prunus persica, Rubus chamaemorus, Pyrus communis, Malus domestica, Prunus domestica. Encore de préférence, le dispositif est destiné à l'étude du pommier, ou Malus domestica. Dans ce cas, le présent dispositif peut être employé pour toutes les variétés de pommier, et en particulier les variétés suivantes : Golden Delicious, MM106 et Evereste. Méthode utilisant le dispositif selon l'invention De manière générale, le dispositif selon l'invention peut être employé pour l'étude de l'état de stimulation des défenses naturelles sur une plante ou une partie de la plante (ou une pluralité de plantes ou de parties de plantes). En pratique, le profil d'expression d'une pluralité d'échantillons d'acides nucléiques et/ou protéines, provenant de plusieurs plantes et/ou parties de plantes, est déterminé au moyen d'un ou d'une série de dispositifs selon l'invention. Cette démarche permet de tenir compte des éventuelles variations dans l'expression des gènes entre les plantes et/ou parties de plantes, et ainsi obtenir des résultats fiables. Parallèlement, des échantillons contrôles sont avantageusement étudiés et analysés avec les dispositifs selon l'invention. Par exemple, les échantillons de contrôle (ou les échantillons de référence) peuvent être obtenus à partir de plantes ou de parties de plantes dont l'état de stimulation des défenses naturelles est connu. Ainsi, les échantillons de contrôle peuvent être issus de plantes ou de parties de plantes qui sont non-traitées et non-stressées, ou qui sont soumises préalablement à un composé stimulateur des défenses naturelles et/ou un stress. Ensuite, afin de déterminer l'état de stimulation des défenses naturelles de végétaux d'intérêt (ayant un état de stimulation des défenses naturelles inconnu), les échantillons obtenus à partir de ces plantes ou parties de plantes seront comparés avec des échantillons provenant de plantes ou parties de plantes dont l'état de stimulation des défenses naturelles est connu. Ainsi, plusieurs échantillons peuvent être analysés au moyen du dispositif selon l'invention, tels que des échantillons d'acides nucléiques et/ou de protéines provenant (i) de plantes ou parties de plantes dont l'état de stimulation des défenses naturelles est connu, (ii) de plantes ou parties de plantes dont l'état de stimulation des défenses naturelles est inconnu, (iii) de plantes ou parties de plantes préalablement soumises à au moins un stress 1 o biotique et/ou abiotique ou (iv) de plantes ou parties de plantes préalablement soumises à au moins un produit pour vérifier ou pour rechercher un effet stimulateur des défenses naturelles. Le dispositif selon l'invention peut ainsi être mis en oeuvre dans un ensemble de procédés, dont certains sont présentés en détails ci-après. 15 Procédé pour identifier un profil d'expression d'une combinaison de gènes cibles Une première application du dispositif selon l'invention est 20 l'identification de profils d'expression de la combinaison précitée de gènes cibles, encore désignés « signatures », qui permettrait de déterminer, ou au moins d'évaluer, l'état de stimulation des défenses naturelles de plantes. Le procédé pour identifier un profil d'expression d'une combinaison de gènes cibles comprend les étapes suivantes : 25 (i) déterminer le profil d'expression d'une combinaison de gènes cibles au moyen du dispositif selon l'invention, sur un ensemble de plantes, ou parties de plantes, appartenant avantageusement à la famille des Rosaceae, dont l'état de stimulation des défenses naturelles est connu, puis (ii) déterminer un profil d'expression d'intérêt de ladite combinaison de gènes 30 cibles correspondant à un état déterminé de stimulation des défenses naturelles desdites plantes ou parties de plantes, partant des données issues de l'étape (i). Au moyen du dispositif selon l'invention et au cours de l'étape (i), on obtient au moins une valeur quantitative d'expression pour chacun des 35 marqueurs biologiques utilisés. L'obtention de plusieurs valeurs quantitatives, pour chaque marqueur biologique utilisé, permet un pronostic plus précis de l'état de stimulation des défenses naturelles. Ces quantifications sont mises en oeuvre sur des échantillons de plantes ou de parties de plantes dont l'état de stimulation des défenses naturelles est connu, choisis avantageusement parmi : - les échantillons de plantes ou de parties de plantes non soumises à un stress et/ou à un produit stimulateur des défenses naturelles ; ou - les échantillons de plantes ou de parties de plantes soumises à un stress ; ou - les échantillons de plantes ou de parties de plantes soumises à un produit stimulateur des défenses naturelles. Par exemple, pour obtenir des échantillons représentatifs d'un stress biotique, on peut pulvériser du peroxyde d'hydrogène sur les plantes ou de parties de plantes. Pour obtenir des témoins négatifs, on peut pulvériser de l'eau osmosée sur les plantes ou de parties de plantes. Pour obtenir des échantillons représentatifs d'une protection vis-à-vis du feu bactérien, on peut appliquer du Bion® sur les plantes ou de parties de plantes. L'étape (ii) consiste à comparer les valeurs quantitatives obtenues à l'étape (i) pour chaque marqueur biologique. Les valeurs d'expression de référence pour chacun des gènes cibles peuvent ainsi être déterminées. Elles constituent ensemble « un profil de référence » qui est pertinent pour distinguer et/ou identifier et/ou déterminer une modification de l'état de stimulation des défenses naturelles. Chaque profil de référence déterminé pour ladite combinaison de marqueurs biologiques est ainsi corrélé à un état de stimulation des défenses naturelles. Selon un mode de réalisation avantageux, les profils de référence, pour la combinaison de marqueurs biologiques selon l'invention, peuvent être prédéterminé par la réalisation d'un procédé comprenant les étapes suivantes : a) fournir au moins une collection d'échantillons de plantes ou de parties de plantes, dont l'état de stimulation des défenses naturelles est déterminé ; b) quantifier au moyen du dispositif selon l'invention, pour chaque échantillon fourni à l'étape a), le niveau d'expression desdits marqueurs biologiques, par lequel une série de valeurs quantitatives pour les marqueurs biologiques de ladite collection d'échantillons est obtenue ; c) déterminer, à partir de ladite série de valeurs de quantification obtenue à l'issue de l'étape b), une corrélation entre un profil déterminé d'expression desdits marqueurs biologiques et un état spécifique de stimulation des 1 o défenses naturelles. Certains profils d'expression intéressants, obtenus au moyen du dispositif selon l'invention, sont présentés dans les exemples. 15 Procédé pour déterminer ou évaluer l'état de stimulation des défenses naturelles Le dispositif selon l'invention a également l'intérêt de pouvoir être mis en oeuvre dans le cadre d'un procédé pour l'analyse de l'état de stimulation des défenses naturelles d'une plante ou partie de plante. 20 Le procédé pour déterminer ou évaluer l'état de stimulation des défenses naturelles d'une plante comprend les étapes suivantes : (i) prélever un échantillon à partir de la plante ou à partir de ladite partie de plante, appartenant avantageusement à la famille des Rosaceae, ayant éventuellement subie tout traitement d'intérêt (par exemple stress ou 25 stimulateur des défenses naturelles), (ii) déterminer le profil d'expression d'une combinaison de gènes cibles dans ledit échantillon prélevé à l'étape (i), au moyen du dispositif selon l'invention, (iii) comparer le profil d'expression obtenu à l'étape (ii) avec un profil d'expression de référence, 30 (iii) déterminer ou évaluer l'état de stimulation des défenses naturelles de ladite plante ou de ladite partie de plante, à partir dudit profil d'expression obtenu lors de l'étape (ii). Le profil d'expression obtenu à l'étape (ii), au moyen du dispositif selon l'invention, est comparé avec un profil d'expression de référence qui correspondent aux valeurs observées pour des échantillons de plantes ou de parties de plantes choisis avantageusement parmi : - les échantillons de plantes ou de parties de plantes non soumises à un stress ou un stimulateur des défenses naturelles ; ou - les échantillons de plantes ou de parties de plantes soumises à un stress (par exemple E. amylovora) ; ou - les échantillons de plantes ou de parties de plantes soumises à un stimulateur des défenses naturelles (par exemple Bion®). En particulier, la surexpression d'au moins un gène cible, et de 1 o préférence encore d'une combinaison de gènes cibles, dans un échantillon étudié, en comparaison d'échantillons de plantes ou de parties de plantes non soumises à un stress ou un stimulateur des défenses naturelles, permet d'identifier les plantes ou parties de plantes présentant un état de stimulation des défenses naturelles qui est activé ou induit. 15 De même, l'expression constante d'au moins un gène cible, et de préférence encore d'une combinaison de gènes cibles, dans un échantillon étudié, en comparaison d'échantillons de plantes ou de parties de plantes soumises à un stress ou un stimulateur des défenses naturelles, permet d'identifier les plantes ou parties de plantes présentant un état de stimulation 20 des défenses naturelles qui est activé ou induit. Procédé pour sélectionner une substance ayant la propriété de moduler l'état de stimulation des défenses naturelles 25 Il existe un besoin pour de nouveaux agents stimulateurs de défenses naturelles, et de méthodes fiables et faciles pour le dépistage d'un grand nombre de composés biologiques ou chimiques, ou de compositions, pour leur utilisation comme agents stimulateurs de défenses naturelles. Il existe également un besoin de vérifier l'activité biologique de 30 composés ou de compositions présentés comme stimulateurs de défenses naturelles. Le dispositif selon l'invention constitue un outil particulièrement intéressant pour identifier de tels composés biologiques ou chimiques, ou de telles compositions contenant de ces composés biologiques ou chimiques, qui soient capables de stimuler les défenses naturelles d'une plante ou partie de plante, appartenant avantageusement à la famille des Rosaceae. L'outil selon l'invention permet en particulier de cribler toute composé actif ou composition active, biologique ou chimique, employé dans le domaine de l'agriculture, de préférence de l'arboriculture et de préférence encore dans le domaine des Maloideae. L'identification d'un tel effet supplémentaire permettrait d'éviter les traitements redondants (notamment par l'application de deux composés activant les mêmes mécanismes de défenses) et de limiter les interactions négatives (certains produits SDN ont des effets antagonistes au regard des voies moléculaires qu'ils régulent). Le procédé de mise en oeuvre du dispositif selon l'invention comprend avantageusement les étapes suivantes : (i) la mise en contact, avec une plante ou partie de la plante (appartenant avantageusement à la famille des Rosaceae), d'un ou plusieurs composés biologiques ou chimiques, ou des compositions comprenant un ou plusieurs composés biologiques ou chimiques, (ii) la détermination du profil d'expression de la combinaison de gènes cibles dans un échantillon prélevé à partir de ladite plante traitée ou de ladite partie de plante traitée suite à l'étape (i), au moyen du dispositif selon l'invention, (iii) la comparaison du profil d'expression obtenu à l'étape (ii) avec un profil d'expression de référence, pour déterminer ou évaluer l'état de stimulation des défenses naturelles dans ledit échantillon, (iv) la sélection positive de ladite substance si la comparaison à l'étape (iii) montre que ladite substance testée à l'étape (i) module l'état de stimulation des défenses naturelles dudit plant ou de ladite partie de plant. Dans l'étape (i), tout composé biologique ou chimique, ou toute composition comprenant un ou plusieurs composés biologiques ou chimiques, peuvent être mis en contact avec les plantes ou parties de plantes. Au moins deux composés et/ou compositions différents peuvent être mise en contact, simultanément ou successivement, avec les plantes ou parties de plantes. De préférence, chaque composé ou composition est mis en contact physique avec une ou plusieurs plantes individuelles. Ce contact peut également être réalisé par différents moyens, tels que la pulvérisation, le brossage, l'application de solutions ou de solides dans ou sur la terre, dans la phase gazeuse entourant les plantes ou parties de plantes, par immersion, etc. Les composés ou compositions testées peuvent être solides, liquides, semi-solides ou gazeux. Les composés ou compositions testées peuvent être synthétisés artificiellement ou naturels, comme les protéines, fragments de protéines, composés organiques volatils, plantes ou animaux ou extraits de micro- organisme, les métabolites, les sucres, les graisses et huiles, les microorganismes comme les virus, bactéries, champignons, etc. Le composé ou la composition biologique comprend encore, ou est constituée, d'un ou de plusieurs micro-organismes, ou un ou plusieurs extraits de plantes. Le profil d'expression obtenu à l'étape (ii), au moyen du dispositif selon l'invention, est comparé selon une méthode décrite précédemment, c'est-à-dire par exemple avec un profil d'expression de référence qui correspondent aux valeurs observées pour des échantillons de plantes ou de parties de plantes choisis avantageusement parmi : - les échantillons de plantes ou de parties de plantes non soumises à un stress ou un stimulateur des défenses naturelles ; ou - les échantillons de plantes ou de parties de plantes soumises à un stress (par exemple E. amylovora) ; ou - les échantillons de plantes ou de parties de plantes soumises à un stimulateur des défenses naturelles (par exemple Bion®). En particulier, la surexpression d'au moins un gène cible, et de préférence encore d'une combinaison de gènes cibles, dans un échantillon étudié, en comparaison d'échantillons de plantes ou de parties de plantes non soumises à un stress ou un stimulateur des défenses naturelles, permet d'identifier les plantes ou parties de plantes présentant un état de stimulation des défenses naturelles du fait de l'action du composé testé ou de la composition testée. Par exemple, la surexpression de la combinaison de gènes cibles PR-1, PR-2, PR-4, PR-5, PR-8, PR-14, HMGR, Far, CSL, PDX, Pect, EDS1 et WRKY permet de sélectionner une substance ayant la propriété de générer un état de stimulation des défenses naturelles d'une plante ou d'une partie de plante appartenant à la famille des Rosaceae, qui assure une protection vis à vis de stress biotiques. De préférence, ce profil d'expression permet la sélection d'une substance ayant la propriété de générer un état de stimulation des défenses naturelles d'une plante ou d'une partie de plante appartenant à la famille des Rosaceae, qui assure une protection vis à vis de Erwinia amylovora. En particulier, cette surexpression pour chacun des gènes cibles précités consiste en un niveau de surexpression relative (avantageusement 1 o par rapport à un traitement à l'eau) supérieur à 3 (ou log2(expression relative)>1,58). De même, l'expression constante d'au moins un gène cible, et de préférence encore d'une combinaison de gènes cibles, dans un échantillon étudié, en comparaison d'échantillons de plantes ou de parties de plantes 15 soumises à un stimulateur des défenses naturelles, permet d'identifier les plantes ou parties de plantes présentant un état de stimulation des défenses naturelles du fait de l'action du composé testé ou de la composition testée. La plante ou partie de plante traitée peut éventuellement être soumise simultanément à un stress abiotique (environnemental), afin d'étudier l'effet 20 de conditions de culture stressantes sur l'efficacité des stimulateurs de défenses naturelles. L'outil selon l'invention peut permettre de sélectionner, et distinguer, des composés stimulateurs directs et des composés potentialisateurs. Pour cela, on peut par exemple étudier le changement du profil 25 d'expression des gènes cibles suite à l'application d'un stress biotique, avec ou sans application préalable d'un composé ou d'une composition d'intérêt. La surexpression d'une combinaison de gènes cibles dans un échantillon après l'application d'un stress biotique, en comparaison d'échantillons de plantes ou de parties de plantes non soumise à un tel 30 stress biotique, permet d'identifier les composés potentialisateurs (ou au moins susceptible d'avoir un tel effet potentialisateur). 35 Procédé pour sélectionner une plante ou une partie de plante La présente invention porte également sur l'identification et la sélection de plantes, appartenant avantageusement à la famille des Rosaceae, présentant un état particulier de stimulation des défenses naturelles, que cet état soit obtenu : (a) naturellement (par croisement ou l'utilisation des variations naturelles) ou artificiellement (en induisant des variations, par exemple par transgénèse des plantes ou des parties de plantes, ou par mutagénèse en utilisant un ou plusieurs agents mutagènes) ; et/ou (b) suite à l'application d'un composé ou d'une composition stimulatrice des défenses naturelles ; et/ou (c) suite à l'application d'un ou de plusieurs stress biotique(s) et/ou abiotique(s). En effet, le dispositif selon l'invention constitue un outil intéressant pour sélectionner une plante, appartenant de préférence à la famille des Rosaceae, présentant un état de stimulation des défenses naturelles susceptible de leur conférer une résistance améliorée à au moins un stress biotique et/ou abiotique d'intérêt. Une méthode pour sélectionner une plante ou partie de la plante ayant un état de stimulation des défenses naturelles améliorée (et donc avec résistance renforcée aux stress biotiques et/ou abiotiques), peut comprendre les étapes suivantes : (i) appliquer le ou les stress, et/ou le ou les stimulateurs de défenses naturelles, à une plante ou une partie de plante, appartenant avantageusement à la famille des Rosaceae, (ii) déterminer le profil d'expression d'une combinaison de gènes cibles dans un échantillon prélevé à partir de ladite plante ou de ladite partie de plante, au moyen du dispositif selon l'invention, (iii) comparer le profil d'expression obtenu à l'étape (ii) avec un profil d'expression de référence, pour déterminer ou évaluer l'état de stimulation des défenses naturelles dans ledit échantillon, (iv) sélectionner positivement ladite plante si la comparaison de l'étape (iii) montre que ledit plant ou ladite partie de plant possède un état de stimulation des défenses naturelles susceptible de leur conférer une résistance améliorée à au moins un stress biotique et/ou abiotique d'intérêt. La plante ou partie de la plante sélectionnée à l'étape (iv) comporte avantageusement un état particulier de stimulation des défenses naturelles, en présence d'agents stimulateurs des défenses naturelles et/ou de stress biotiques et/ou de stress abiotiques. Le profil d'expression obtenu à l'étape (ii), au moyen du dispositif selon l'invention, est comparé selon une méthode décrite précédemment, c'est-à-dire par exemple avec un profil d'expression de référence qui correspondent aux valeurs observées pour des échantillons de plantes ou de parties de plantes choisis avantageusement parmi : - les échantillons de plantes ou de parties de plantes non soumises à un stress ou un stimulateur des défenses naturelles ; - les échantillons de plantes ou de parties de plantes soumises à un stimulateur des défenses naturelles ; ou - les échantillons de plantes ou de parties de plantes soumises à un stress. La surexpression d'au moins un gène cible, et de préférence encore d'une combinaison de gènes cibles, dans un échantillon étudié, en comparaison d'échantillons de plantes ou de parties de plantes soumises à un stress ou un stimulateur des défenses naturelles, permet d'identifier les plantes ou parties de plantes présentant un état de stimulation des défenses naturelles susceptible de présenter une résistance améliorée à au moins un stress biotique et/ou abiotique d'intérêt. Le dispositif selon l'invention permet ainsi de cribler les génotypes pour leur réactivité aux produits SDN. Séquences SEQ ID N°1 à 31 : séquences des ADNc issus des gènes cibles et des gènes de références ; SEQ ID N°32 à 93: séquences d'amorces PCR pour l'amplification des séquences SEQ I D N °1 à 3135 Exemple Matériel : Dispositif selon l'invention Plaque de microtitration 96-puits prête à l'emploi, contenant les couples d'amorces SEQ ID n°32 à 93 pour (i) les 28 gènes cibles SEQ ID n°1 à 28 et (ii) les 3 gènes de référence SEQ ID n°29 à 31, (répartis dans trois puits pour chaque couple) sous forme déshydratées (évaporation une nuit à 60°C) et en quantité suffisante pour atteindre les concentrations finales optimales détaillées dans le tableau 3 ci-dessous. Tableau 3 : Amorces et concentrations optimales cour la technique PCR Nom du Amorces SEQ ID Taille amplicon Concentration gène (bp) optimale (nm) PR-1 PR1 di 32 167 200 PR1-re 33 PR-2 PR2 di 34 152 400 PR2-re 35 PR-4 PR4 di 36 123 200 PR4-re 37 PR-5 PR5 di 38 100 600 PR5-re 39 PR-8 PR8 di 40 173 200 PR8-re 41 PR-14 PR14 di 42 192 200 PR14-re 43 PR-15 PR15 di 44 132 200 PR15-re 45 PAL PAL-di 46 133 200 PAL-re 47 CHS CHS-di 48 234 100 CHS-re 49 DFR DFR di 50 239 200 DFR-re 51 ANS ANS di 52 298 200 ANS-re 53 PPO PPO di 54 124 200 PPO-re 55 HMGR HMGR-di 56 206 400 HMGR-re 57 45 Nom du Amorces SEQ ID Taille amplicon Concentration gène (bp) optimale (nm) FPPS FPPS di 58 255 200 FPPS-re 59 Far Far di 60 161 200 Far-re 61 CSL CSL di 62 134 200 CSL-re 63 APDX APX-di 64 185 200 APX-re 65 GST GST-di 66 185 200 GST-re 67 PDX PDX-di 68 197 100 PDX-re 69 CaIS cals di 70 176 200 CaIS-re 71 Pect Pect di 72 173 300 Pect-re 73 CAD CAD di 74 85 200 CAD-re 75 EDS1 EDS1-di 76 269 200 EDS1-re 77 WRKY WRKY-di 78 171 200 WRKY-re 79 LOX2 LOX2-di 80 199 100 LOX2-re 81 JAR JAR di 82 118 200 JAR-re 83 ACCO ACCO di 84 193 200 ACCO-re 85 EIN3 EIN3 di 86 212 400 EIN3-re 87 TuA TuA di 88 118 300 TuA-re 89 Actin Actin di 90 140 100 Actin-re 91 GAPDH GAPDH-di 92 103 300 GAPDH-re 93 Protocole : L'expression des 28 gènes cibles a été suivie (i) dans des feuilles de semis de Pommier (obtenus par pollinisation libre de la variété Golden Delicious, voir Brisset et al. Eur. J. Plant Pathol. 106, 529-536, 2000) soumis à des traitements de type SDN et à divers stress abiotiques, ainsi que (ii) dans des feuilles de scions greffés de deux génotypes de Pommier, Evereste et MM106 (voir Venisse et al. Molecular Plant-Microbe Interactions 15, 1204-1212, 2002), après infection par Erwinia amylovora, agent du feu bactérien. Le protocole mis en oeuvre comprend les étapes 1 à 7 suivantes : 1) Traitement des plants par pulvérisation, arrosage ou infiltration du produit (ou d'eau osmosée pour les témoins négatifs). Les divers traitements ont été appliqués de la manière suivante : - Baba (a.i. 95% acide DL-B-amino-n-butyrique, Sigma ref A-2004) appliqué par arrosage d'une solution 10 mM (5 ml par pot de 150 ml), - Bion® (a.i. 50% acibenzolar-S-methyl, Syngenta) appliqué par pulvérisation jusqu'à ruissellement d'une solution à 0,4 g/I, - Rhodofix® (a.i. 1% acide a-naphtylacétique, Nufarm SAS) appliqué par pulvérisation jusqu'à ruissellement d'une solution à 1,5 g/I, - Régalis® (a.i. 10% prohexadione-calcium, BASF Agro, BASF Agro) appliqué par pulvérisation jusqu'à ruissellement d'une solution à 2,5 g/I, - PRM® 12 RP (a.i. 11,3% éthéphon, Bayer CropScience) appliqué par pulvérisation jusqu'à ruissellement d'une solution à 3 ml/l, - MeJA (a.i. 95% methyl jasmonate, Aldrich ref 39,270-7) appliqué par arrosage d'une solution 10 mM (5 ml par pot de 150 ml), - Deshydratation appliquée par arrêt de l'arrosage, - PEG (a.i. polyéthylène glycol 6000, Merck ref 807491) appliqué par imbibition jusqu'à saturation du terreau (2 fois 3 mn) à l'aide d'une solution à 36°/0, - Paraquat (a.i. paraquat dichloride x-hydrate PESTANAL®, Fluka ref 36541) appliqué par pulvérisation jusqu'à ruissellement d'une solution 100 µM, - H202 (a.i. 30% peroxyde d'hydrogène) appliqué par pulvérisation jusqu'à ruissellement d'une solution à 10 ml/l, - E. amylovora appliqué par infiltration d'une suspension de la souche CFBP1430 ajustée à 10' cfu/ml. 2) Pulvérisation optionnelle de peroxyde d'hydrogène 24h après l'étape 1), pour mimer l'attaque par un pathogène (ce qui permet de différencier les stimulateurs directs et les potentialisateurs). 3) Prélèvement de tissus 24h, 48h et 72h après traitement. 4) Congélation immédiate des tissus dans l'azote liquide et conservation à -80°C. 5) Extraction d'ARN, reverse-transcription, vérification d'absence d'ADN génomique selon Venisse et al. (Molecular Plant-Microbe Interactions 15, 1204-1212, 2002). 6) Amplification par PCR quantitative de chaque extrait en préparant le mix suivant : 5 pg d'ADNc, X pl de mix qPCR selon les instructions du fournisseur, et qsp 2500 pl eau ultrapure, en le distribuant à raison de 25 pl par puits de la plaque 96-puits prête à l'emploi, et en effectuant l'amplification selon un programme qPCR de 40 cycles. 7) Exploitation des résultats selon la méthode du AACt qui fournit les expressions relatives des gènes de défense dans un échantillon donné par rapport à un échantillon non traité appelé « calibrateur », expressions normalisées par la moyenne géométrique des gènes de référence de ces échantillons, (Vandesompele et al., Genome Biol. 3(7) : research0034.1- 0034.11, 2002 ; Livak et Schmittgen, Methods 25:402-408, 2001). Les résultats d'expression des 28 gènes cibles sont détaillés dans les tableaux 4, 5 et 6 ci-après, consistant en une matrice des expressions relatives par rapport à des témoins « eau » (prélevés aux mêmes temps) transformées en log de base 2 (J=jour, h=heure). Ces résultats sont répartis dans trois tableaux, uniquement dans un souci de présentation. Résultats : a) Les produits Bion, Rhodofix et Régalis montrent une activation assez similaire de la combinaison de gènes suivants : PR-1, PR-2, PR-4, PR-5, PR-8, PR-14, HMGR, Far, CSL, PDX, Pect, EDS1 et WRKY, avec des niveaux de surexpression relative (par rapport à l'eau) souvent bien supérieurs à 3 (ou log2(expression relative)>1,58, tableaux 4 à 6). Ces trois produits assurent par ailleurs une protection significative et reproductible vis-à-vis du feu bactérien. Il est intéressant de noter que parmi ces 3 produits, seul le Bion (analogue de l'acide salicylique) est homologué comme SDN (sur des espèces autres que le Pommier). Les inventeurs ont déjà montré son efficacité de protection vis-à-vis du feu bactérien, mais également envers la tavelure et le puceron cendré, protection corrélée à l'accumulation de quelques protéines de défense (Brisset et al., 2000 et 2005). 1 o Le Rhodofix (analogue d'auxine) est un éclaircisseur utilisé dans les vergers de Pommier pour alléger la charge en fruits. D'après les présents essais, ce produit aurait également des effets de stimulation de défense, ce qui n'a jamais été décrit. Quant au Régalis (inhibiteur de gibbérellines par inhibition de 15 dioxygénases), il est également utilisé dans les vergers de Pommier comme réducteur de croissance des pousses. Les inventeurs ont déjà démontré sa capacité de protection vis-à-vis du feu bactérien, qui pouvait être liée à la réduction de croissance (Brisset et al., 2005). 20 Les analyses d'expression de gènes montrent qu'il a également la capacité d'induire des défenses, en particulier de type protéines PR, ce qui, là encore, n'a jamais été décrit. b) Les deux produits MeJA et PRM 12 montrent de leur côté une activation assez similaire d'une combinaison de gènes de défense : PR-14, 25 PAL, CHS, DFR, CSL, Pect, ACCO et EIN3 avec des niveaux de surexpression relative par rapport à l'eau souvent supérieurs à 3 (ou log2(expression relative)>1,58, tableaux 4 à 6). Au niveau protection, ces deux produits montrent une efficacité très variable suivant les essais mais, dans le meilleur des cas, n'atteint jamais 30 l'efficacité des produits Bion, Rhodofix et Régalis. Il est à remarquer que PRM 12 (analogue de l'éthylène) est également un éclaircisseur utilisé dans les vergers de Pommier. Au vu des présents résultats, le Rhodofix devrait être préféré au PRM 12 pour sa double fonction d'éclaircisseur et de stimulateur de défenses. c) Le Baba appliqué dans nos conditions expérimentales (arrosage) montre peu d'effet sur les modulations de gènes et aucun effet de protection vis-à-vis du feu bactérien. Il représente donc un témoin négatif dans nos expériences. Il valide également l'utilisation de l'H2O2 dans le mode opératoire. En effet le Baba est connu comme potentialisateur et non comme stimulateur direct, son action sur les défenses n'étant révélée qu'après le stress provoqué par un agent pathogène. Dans notre mode opératoire, l'action de ce dernier est simulée par l'application d'H2O2. Les résultats montrent bien que ce traitement supplémentaire déclenche l'expression de quelques gènes (PDX, Pect par exemple) qui ne sont pas activés par le seul traitement Baba. Ce phénomène en revanche n'est pas clairement observé pour les autres stimulateurs qui semblent donc être plutôt des stimulateurs directs. d) Vu dans leur ensemble, les résultats obtenus avec les 6 produits type SDN semblent indiquer que la surexpression des gènes PR-1, PR-2, PR-4, PR-5, PR-8, PR-14, HMGR, Far, CSL, PDX, Pect, EDS1 et WRKY (avantageusement avec des niveaux d'expression relative, par rapport à l'eau, supérieurs à 3), permet d'assurer une protection significative vis-à-vis du feu bactérien en conditions contrôlées. En revanche, la surexpression des gènes PR-14, PAL, CHS, DFR, CSL, Pect, ACCO et EIN3 (avec des niveaux d'expression relative par rapport à l'eau avantageusement supérieurs à 3) ne permet pas d'assurer cette protection. e) Les stress abiotiques ont été appliqués en vue de répondre à deux questions : i) peut-on avoir des artefacts sur l'expression des gènes de défense si les expérimentations de produits type SDN se déroulent dans des conditions environnementales plus contraignantes pour les plantes (c'est-à- dire observer des activations de gènes dues aux conditions stressantes et non aux SDN) et ii) des conditions environnementales stressantes empêchent-elles la réaction des plantes aux SDN (ce qui aurait alors un impact pour la réussite des traitements en verger). Les résultats actuels répondent en partie à la première question. Les stress hydrique (déshydratation), osmotique (PEG) et faiblement oxydant (H2O2 - servant également de témoin pour les tests de potentialisation) ne modulent que faiblement les expressions des gènes cibles. Seul un fort stress oxydant (paraquat = herbicide provoquant la production d'ion superoxyde) active fortement quelques gènes mais dans l'ensemble, les activations sont plus faibles que celles obtenues avec le Bion par exemple. f) Les réponses des gènes à une infection par E. amylovora montre que cette bactérie module dans l'ensemble les mêmes gènes cibles que les traitements Bion, Rhodofix ou Régalis, mais souvent avec une amplitude plus faible, en particulier pour les gènes de protéines PR. Comme la bactérie réprime fortement les gènes des voies de l'acide jasmonique et des phénylpropanoïdes, on aurait pu s'attendre à ce que des produits provoquant l'effet inverse de type MeJA ou PRM 12 soient efficaces en terme de protection, ce qui n'est pas le cas dans nos conditions expérimentales. Les résultats dans leur ensemble montrent au contraire que les produits qui assurent une protection significative activent la même combinaison de gènes que la bactérie elle-même (PR-1, PR-2, PR-4, PR-5, PR-8, PR-14, HMGR, Far, CSL, PDX, Pect, EDS1 et WRKY).20 Tableau 4 Expression relative des gènes de défense dans des feuilles de pommiers soumis à différents traitements (SDN potentiels, stress abiotiques, infection par E. amylovora) Traitements Délai de PR-1 PR-2 PR-4 PR-5 PR-8 PR-14 PR-15 PAL ANS prélèvement J2 1,85 3,04 3,00 2,75 0,02 -0,29 1,84 0,42 1,28 J2 -0,70 0,24 -0,71 0,92 0,10 -2,34 -0,53 0,27 1,53 -H202 J3 0,01 0,20 -2,45 -0,26 -0,37 -3,35 0,04 0,20 -1,09 Baba J3 2,08 -1,69 -0,57 0,86 -0,52 3,90 1,82 0,29 -0,10 J2 5,93 8,90 6,58 2,84 3,33 6,56 0,84 0,29 1,41 J2 0,08 -0,98 0,16 -0,40 0,39 -2,63 0,71 0,55 2,12 +H202 J3 2,71 4,26 -2,18 1,91 1,39 -0,53 1,46 -0,84 0,19 J3 1,77 -2,32 -0,86 1,34 -1,00 1,17 2,06 -0,12 1,25 J2 8,37 6,89 8,61 5,77 6,07 3,31 1,88 -0,14 1,51 J2 3,20 9,64 7,17 1,02 3,50 3,75 1,61 1,11 0,21 -H202 J3 5,99 7,99 5,43 4,46 2,23 4,09 -1,98 -1,29 -1,56 Sion J3 2,14 1,61 8,07 3,88 1,62 0,49 4,96 -0,15 0,14 J2 8,53 11,96 10,25 6,52 5,57 2,22 4,09 -0,25 -0,15 J2 3,87 6,36 5,10 2,43 3,25 2,95 1,72 1,91 1,50 +H202 J3 7,66 13,12 6,37 4,11 2,74 5,01 1,33 -2,25 -4,05 J3 5,35 7,07 8,03 5,68 3,62 4,52 3,60 0,83 0,14 J2 2,61 9,34 6,87 1,75 3,16 5,43 0,98 1,78 2,40 -H202 Rhodofix J3 5,99 7,56 9,06 3,15 3,56 6,59 2,93 0,32 0,77 J2 3,87 6,85 7,42 2,72 3,19 4,49 4,83 1,15 1,49 +H202 J3 6,47 6,19 8,82 3,13 3,74 4,29 3,15 0,14 1,29 J2 4,76 3,80 3,25 2,42 4,07 7,55 2,77 0,22 1,31 J2 2,08 5,91 3,45 -0,84 2,29 3,31 1,12 1,36 0,77 -H202 J3 3,62 4,38 3,09 0,96 1,36 0,79 -0,08 0,64 -0,05 Régalis J3 4,11 3,84 3,80 1,22 1,91 6,20 1,37 0,58 2,70 J2 4,02 11,09 8,82 4,24 4,07 5,07 0,63 0,81 2,37 J2 1,85 1,57 6,39 -1,92 2,72 4,80 6,12 2,69 1,92 +H202 J3 4,00 8,88 2,56 1,46 1,00 4,66 3,73 -0,51 -1,58 J3 1,99 0,07 2,72 1,66 -0,39 2,50 0,54 0,12 0,06 J2 0,34 2,00 0,96 0,61 0,37 0,16 0,30 0,41 0,19 -H202 PRM12 J3 1,13 -1,11 5,13 -0,73 2,56 5,92 5,40 4,10 4,49 J2 2,41 1,94 0,14 -0,17 0,91 1,90 2,46 1,38 3,45 +H202 J3 1,89 -2,70 0,21 1,64 -0,30 5,05 3,13 -0,33 2,86 J2 1,56 4,03 2,68 -0,59 1,85 3,45 -0,19 3,17 2,31 -H202 MeJA J3 2,35 3,69 2,63 1,49 1,00 5,09 1,21 1,66 1,58 J2 0,40 3,89 1,25 -2,09 1,41 -0,64 3,20 3,36 3,29 +H202 J3 2,84 0,66 2,84 -1,22 1,51 3,66 2,77 2,01 1,44 J2 -2,01 -1,80 -4,15 0,57 0,39 -2,11 1,82 -2,26 0,60 Deshydratation J4 -0,91 -1,65 -4,21 0,00 0,00 -0,56 0,00 -0,12 0,00 J7 1,12 -1,28 -4,36 1,20 0,70 2,71 3,01 -1,54 -1,25 J10 0,47 -1,06 -3,33 2,49 2,15 3,09 2,66 -2,12 -1,24 Traitements Délai de PR-1 PR-2 PR-4 PR-5 PR-8 PR-14 PR-15 PAL ANS prélèvement J1 2,56 4,72 3,01 0,00 0,00 1,46 0,00 0,41 0,00 J2 4,07 0,29 1,00 -3,97 -1,15 6,49 -0,87 0,20 1,02 J2 -2,07 -2,05 -5,05 1,44 0,15 3,82 1,10 -4,43 -1,86 PEG J3 1,07 0,69 3,92 -11.1 1,75 5,87 -6,54 0,68 3,82 J4 -1,32 -1,24 1,64 -0,20 1,60 5,33 1,83 -0,64 0,02 J7 0,92 -2,37 0,03 -1,07 1,52 8,06 1,51 -2,1 0 0,21 J10 0,16 -1,62 2,30 -1,38 1,63 5,71 1,61 -2,72 -1,37 J1 0,55 4,09 7,10 0,00 0,00 2,61 0,00 1,99 0,00 Paraquat J2 3,00 5,88 6,93 -3,05 5,12 6,04 4,77 2,56 -2,09 J3 0,54 2,53 6,63 -8,56 5,36 1,28 -0,34 0,66 -0,78 J2 2,44 4,75 2,53 3,02 0,83 -1,92 -0,20 1,91 -0,58 J2 -2,09 3,92 4,27 -0,64 0,79 -1,17 1,35 0,91 0,82 H2O2 J3 0,66 2,36 -2,25 0,41 0,38 0,70 -0,82 -0,87 -2,02 J3 4,31 3,38 6,36 4,37 2,00 3,18 1,32 -0,06 0,17 6h 4,82 7,68 6,71 1,45 5,90 4,20 6,54 1,49 -2,33 E. amylovora 6h 1,56 1,28 4,30 5,49 6,86 3,90 4,82 0,87 0,61 24h 5,24 3,14 5,19 1,98 5,04 3,90 9,64 0,44 -0,82 24h 4,18 -0,65 2,91 -0,65 3,82 2,00 9,00 -0,63-2,17 Tableau 5 Expression relative des gènes de défense dans des feuilles de pommiers soumis à différents traitements (SDN potentiels, stress abiotiques, infection par E. amylovora) Traitements Délai de CHS DFR PPO HMGR FPPS Far CSL APDX GST prélèvement J2 0,27 0,64 -0,06 1,22 -0,02 0,85 -0,37 0,02 -0,05 J2 0,29 0,93 -1,07 -0,67 -0,41 -0,28 0,38 2,14 -0,34 -H2O2 J3 0,19 -0,02 0,54 1,95 0,46 0,81 0,55 -1,18 0,51 Baba J3 0,31 0,72 1,24 -0,52 0,56 -1,03 1,34 0,11 -0,14 J2 -0,50 -0,28 -2,03 2,50 0,60 1,91 1,50 1,49 0,14 J2 1,18 1,17 -1,09 -1,67 -0,79 -1,50 0,36 1,76 -0,71 +H2O2 J3 -0,47 0,42 -0,67 1,98 1,46 1,25 -0,34 1,20 0,88 J3 0,12 0,73 1,87 -0,09 -0,08 -0,31 0,56 2,41 -0,27 J2 -0,36 -0,09 1,78 3,27 -1,44 4,65 4,37 1,49 0,64 J2 1,50 2,12 5,84 2,30 1,01 2,22 4,44 0,11 1,81 -H2O2 J3 -1,36 -0,49 1,65 4,30 1,59 3,82 4,71 -0,34 1,24 Sion J3 -0,95 -0,13 4,27 1,21 0,74 2,13 4,05 1,09 0,36 J2 -0,87 -1,18 -0,39 5,25 1,78 4,75 5,08 1,98 0,93 J2 1,57 1,44 2,22 1,04 0,26 3,69 2,97 -0,06 0,68 +H2O2 J3 -1,81 0,16 2,35 6,40 2,38 3,03 6,33 -0,37 2,08 J3 0,03 1,38 3,84 2,82 1,75 2,30 3,97 2,74 1,14 J2 1,79 2,28 1,63 0,93 -0,45 1,98 2,99 -1,09 1,76 -H2O2 Rhodofix J3 0,60 1,89 3,86 1,57 0,54 2,53 4,13 -1,04 1,59 J2 1,71 1,74 1,84 0,13 -0,21 1,64 2,93 0,34 1,58 +H2O2 J3 0,50 1,68 3,01 1,52 0,55 1,71 4,55 -0,20 1,18 J2 0,16 0,63 -0,16 1,72 0,11 2,12 0,35 1,25 1,09 J2 1,83 2,13 0,41 -0,04 -0,22 0,76 1,87 0,39 1,56 -H2O2 J3 0,22 0,67 0,57 2,90 1,42 1,79 1,90 -0,73 2,28 Régalis J3 0,83 2,32 1,15 0,31 0,14 -0,20 2,15 -1,34 1,52 J2 0,14 0,67 -1,85 3,50 1,10 2,43 1,63 1,63 1,48 J2 2,88 3,35 4,53 -0,92 -0,22 0,59 3,11 0,79 2,14 +H2O2 J3 0,85 2,57 -0,43 3,49 2,97 2,62 2,12 -0,69 1,77 J3 0,18 0,51 1,47 -0,29 0,09 -0,42 1,18 -3,31 -0,46 J2 0,08 0,23 1,59 0,23 -0,46 -0,18 0,59 0,53 0,48 -H2O2 PRM12 J3 3,78 4,60 5,67 1,41 0,62 0,57 4,12 1,15 1,88 J2 1,96 1,98 -0,58 -1,17 -1,18 -1,85 1,90 1,01 0,44 +H2O2 J3 0,23 1,10 0,63 0,09 0,30 -1,62 1,42 -1,91 0,68 J2 2,97 2,92 1,28 1,49 0,00 2,34 2,29 -3,00 1,00 -H2O2 MeJA J3 1,22 1,55 0,78 1,16 0,13 1,51 1,81 0,95 -0,15 J2 3,73 3,43 0,80 -0,38 -0,07 0,74 2,26 1,87 0,47 +H2O2 J3 1,47 1,36 1,23 0,60 0,43 0,39 1,46 2,11 0,87 J2 0,73 1,83 -1,22 0,38 -1,48 2,62 -0,41 -1,40 -2,02 Deshydratation J4 2,34 2,06 -0,69 1,55 -2,61 0,92 -0,86 0,00 -3,05 J7 1,45 2,08 -0,74 1,05 -2,70 2,51 -0,10 0,54 -1,37 J10 1,08 1,87 -0,14 1,28 -3,63 1,64 0,50 1,90 -1,55 Traitements Délai de CHS DFR PPO HMGR FPPS Far CSL APDX GST prélèvement J1 0,93 0,87 0,37 -1,18 -0,12 3,26 1,24 0,00 0,20 J2 0,05 1,12 0,35 -0,87 0,29 0,96 1,18 2,38 -0,01 J2 -0,67 0,78 1,76 1,66 -2,51 1,06 -0,15 -1,37 -0,73 PEG J3 0,64 2,42 -1,57 0,20 -0,79 1,45 2,23 1,31 -0,39 J4 1,96 1,80 1,17 1,33 -3,95 -1,20 1,20 -0,35 -0,71 J7 1,74 1,83 -2,02-0,07-4,15 0,18 0,75 0,68 -0,79 J10 1,09 1,00 1,22 0,45 -4,63-2,01 1,65 -1,06 -0,82 J1 -1,56 -0,74 0,67 2,85 1,02 2,76 2,29 0,00 1,99 Paraquat J2 -1,49 -1,14 6,27 1,20 0,15 2,30 4,42 2,01 1,83 J3 -2,04 -2,09 4,63 -0,24-1,83 1,85 5,43 1,48 0,80 J2 0,35 0,50 -1,99 2,70 1,94 2,37 0,53 0,41 -0,81 J2 1,33 0,80 -0,71 -0,07 -1,18 -0,97 -0,02 0,38 -0,02 H2O2 J3 -0,51 -0,73 -1,75 3,13 1,96 0,51 -0,38 -1,38 0,33 J3 -0,09 0,57 1,24 1,37 0,85 2,02 1,64 0,77 0,40 6h 2,67 -1,16 6,27 4,71 5,12 6,13 4,94 -2,33 4,10 E. amylovora 6h -4,28-4,32 6,18 2,86 2,64 4,46 3,90 0,61 2,53 24h -1,32 -0,16 7,60 3,71 2,52 3,58 5,20 -0,82 3,24 24h 2,85 -9,79 8,04 2,68 1,78 5,68 3,70 -2,17 3,43 Tableau 6 Expression relative des gènes de défense dans des feuilles de pommiers soumis à différents traitements (SDN potentiels, stress abiotiques, infection par E. amylovora) Délai de WRK ACC Traitements prélèvement PDX CAD CaIS Pect EDS1 Y LOX2 JAR O EIN3 J2 0,44 -0,45 0,19 -0,04 0,41 -1,51 0,37 -0,80 0,10 -0,09 J2 1,57 0,26 0,66 -1,38 0,08 -0,34 -0,61 0,56 -0,26 3,15 -H2O2 J3 -1,16 0,71 0,00 -0,73 0,16 -1,33 -0,69 -0,29 0,00 -0,65 J3 0,95 -0,30 0,35 1,66 -1,70 2,55 0,09 0,29 0,43 0,41 Baba J2 2,20 -0,87 0,75 2,04 1,13 0,34 0,10 -0,44 1,14 0,60 J2 2,28 -0,16 0,44 -1,76 -0,69 -1,71 -0,41 -0,16 2,13 1,94 +H2O2 J3 1,41 -0,15 2,10 2,96 0,97 0,27 -0,62 1,52 0,64 1,69 J3 3,22 -0,29 1,88 2,11 -0,58 -0,35 0,09 1,02 2,14 1,32 J2 3,76 -0,36 1,31 2,63 3,21 1,67 -0,75 -1,13 1,28 -0,64 J2 2,77 0,56 -0,27 -0,32 3,65 4,54 -1,00 -1,32 2,24 2,03 -H2O2 J3 3,56 -0,30 0,49 1,61 3,26 2,22 -1,18 -0,57 1,36 0,05 J3 4,65 0,34 0,89 0,99 2,50 4,79 0,00 -0,62 0,69 0,22 Sion J2 4,75 -1,34 0,97 2,35 3,50 2,08 -1,78 -1,39 1,60 -0,09 J2 1,76 0,28 0,06 0,50 2,74 3,47 0,31 -0,32 3,40 2,22 +H2O2 J3 1,72 -1,08 0,94 1,89 4,09 1,77 -1,71 -1,46 1,78 -0,70 J3 5,67 0,31 1,27 3,73 4,15 7,33 0,16 0,87 3,01 1,67 J2 3,68 0,09 0,44 1,68 2,49 0,38 -0,39 -1,04 0,98 2,03 -H2O2 J3 6,80 -0,10 0,51 2,97 3,04 4,50 -cos -1,54 2,42 -0,13 Rhodofix J2 4,84 0,15 0,90 -0,18 2,16 2,19 0,19 -0,60 2,68 1,42 +H2O2 J3 5,52 -0,26 1,11 2,66 1,12 4,09 0,40 0,20 4,22 0,89 J2 2,92 0,63 0,39 3,00 2,14 1,84 -0,59 -0,14 0,93 1,52 J2 2,94 0,63 -0,46 -0,30 1,43 0,52 -0,15 -0,10 1,81 1,56 -H2O2 J3 1,50 0,82 0,19 1,63 3,43 -0,99 0,20 -0,66 0,66 -0,44 J3 5,21 0,78 -0,07 2,72 1,49 1,08 0,25 -0,38 1,52 -0,17 Régalis J2 4,60 -0,54 0,17 3,65 1,40 -0,35 -1,07 -1,78 1,27 0,68 J2 2,65 0,68 -0,72 -1,86 0,76 2,12 0,44 -0,64 2,81 0,91 +H2O2 J3 2,10 -0,31 0,58 0,44 2,50 -0,96 0,10 -0,27 0,85 -1,09 J3 1,28 -0,04 0,51 1,12 0,01 -0,02 0,89 -3,59 3,40 0,66 J2 0,56 0,67 0,78 0,29 0,34 -1,70 -0,39 -0,34 0,93 2,56 -H2O2 J3 3,25 0,94 1,05 -0,90 -0,13 4,08 1,72 0,40 2,23 0,59 PRM12 J2 3,59 -0,36 0,30 1,47 -0,50 -0,94 -0,24 -0,22 3,56 2,74 +H2O2 J3 2,52 0,00 1,24 4,88 -0,32 1,27 0,13 1,03 4,56 2,32 J2 0,66 1,52 0,05 0,98 1,91 1,25 1,60 1,25 1,92 3,82 -H2O2 J3 3,86 0,01 1,14 3,87 1,22 0,85 1,45 0,63 1,96 1,22 MeJA J2 2,84 0,70 0,48 -2,02 -0,17 -0,06 1,51 0,73 3,48 2,54 +H2O2 J3 4,29 0,35 1,48 2,16 0,98 3,46 1,99 1,61 2,28 1,80 J2 -0,03 -0,89 0,23 -1,95 -0,07 -1,80 1,19 0,30 0,32 -1,87 J4 0,00 -0,87 0,00 0,00 0,44 -2,58 1,07 0,00 0,71 0,00 Deshydratation J7 1,54 -0,48 -0,53 2,56 0,13 0,63 1,85 -0,46 0,03 -1,23 J10 2,44 -0,43 0,12 4,46 0,23 -0,39 2,06 0,04 1,74 0,91 Délai de WRK ACC Traitements prélèvement PDX CAD CaIS Pect EDS1 Y LOX2 JAR O EIN3 J1 0,00 0,59 0,00 0,00 0,24 -1,23 1,51 0,00 -1,96 0,00 J2 -1,33 0,72 0,24 2,18 0,46 0,70 2,48 1,06 0,69 0,02 J2 -1,07 -0,52 0,38 -1,23 -0,92 -0,10 2,19 -0,46 -0,56 -1,82 PEG J3 -3,29 -0,31 -0,89 -0,98 0,96 3,41 0,41 -1,00 0,51 -0,36 J4 0,81 0,86 0,43 2,37 -1,62 -1,24 1,36 -1,43 -0,33 0,63 J7 0,00 0,06 0,86 2,38 -0,54 -2,30 1,96 -0,19 -0,36 -0,18 J10 -2,50 0,58 -0,08 0,56 -2,40 -1,11 1,00 -1,66 1,16 -0,07 J1 0,00 0,04 0,00 0,00 0,83 4,01 -0,58 0,00 -1,33 0,00 Paraquat J2 4,26 0,27 0,42 2,17 2,89 6,37 -0,54 -0,81 0,02 0,21 J3 -0,53 -0,51 0,01 -2,82 2,28 2,76 -2,37 -2,46 0,41 -0,11 J2 1,07 -1,64 1,67 -0,44 1,42 -0,04 0,18 1,09 0,89 1,44 J2 1,06 0,29 0,27 -1,62 -0,36 -0,12 -0,45 -0,27 1,36 1,53 H202 J3 -0,26 -0,72 -0,10 0,71 0,19 -2,26 0,16 -0,56 0,30 -0,26 J3 1,88 -0,54 0,93 1,65 2,08 4,02 0,42 0,43 0,84 0,41 6h 2,76 1,95 1,31 -1,27 1,36 6,02 -4,60 -3,83 1,66 5,00 6h 3,64 1,63 2,92 -0,60 2,03 8,29 -4,63 -0,19 1,37 6,02 E. amylovora 24h -0,79 1,81 0,09 -3,72 1,25 2,13 -3,50 -2,34 1,31 1,74 24h 1,12 2,46 -0,42 -5,98 0,91 2,51 -2,57 -5,31 1,11 0,97 REVENDICATIONS- 1.- Dispositif pour déterminer ou étudier l'état de stimulation des défenses naturelles de plantes ou parties de plantes, lequel dispositif comprend des moyens de détermination du niveau d'expression d'une combinaison de gènes cibles dans un échantillon de plantes ou parties de plantes, lesdits moyens de détermination comprenant : (a) un moyen de détermination du niveau d'expression d'au moins un gène cible choisi parmi les gènes cibles suivants : PR-1, PR-2, PR-4, PR-5, PR-8, PR-14, PR-15 ; (b) un moyen de détermination du niveau d'expression d'au moins un gène cible choisi parmi les gènes cibles suivants : PAL, CHS, DFR, ANS, PPO ; (c) un moyen de détermination du niveau d'expression d'au moins un gène cible choisi parmi les gènes cibles suivants : HMGR, FPPS, Far ; (d) un moyen de détermination du niveau d'expression du gène cible CSL ; (e) un moyen de détermination du niveau d'expression d'au moins un gène cible choisi parmi les gènes suivants : APDX, GST, PDX ; (f) un moyen de détermination du niveau d'expression d'au moins un gène cible choisi parmi les gènes cibles suivants : CaIS, Pect, CAD ; (g) un moyen de détermination du niveau d'expression d'au moins un gène cible choisi parmi les gènes cibles suivants : EDS1, WRKY ; (h) un moyen de détermination du niveau d'expression d'au moins un gène cible choisi parmi les gènes cibles suivants : LOX2, JAR ; (i) un moyen de détermination du niveau d'expression d'au moins un gène cible choisi parmi les gènes cibles suivants : ACCO, EIN3. 2.- Dispositif selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il comprend les moyens de détermination du niveau d'expression des gènes suivants : (i) pour le groupe (a), un moyen de détermination du niveau d'expression de l'un au moins des gènes suivants : PR-1, PR-2, PR-4 et/ou PR-8, un moyen de détermination du niveau d'expression du gène PR-5, un moyen de détermination du niveau d'expression du gène PR-14 et un moyen de détermination du niveau d'expression du gène PR-15, (ii) pour le groupe (b), un moyen de détermination du niveau d'expression du gène PAL, un moyen de détermination du niveau d'expression de l'un au moins des gènes suivants : CHS, DFR ou ANS, et un moyen de détermination du niveau d'expression du gène PPO,(iii) pour le groupe (c), un moyen de détermination du niveau d'expression de l'un au moins des gènes suivants : HMGR et Far, et un moyen de détermination du niveau d'expression du gène FPPS, (iv) pour le groupe (e), un moyen de détermination du niveau d'expression du gène APDX et un moyen de détermination du niveau d'expression de l'un au moins des gènes suivants : GST et PDX. 3.- Dispositif selon l'une quelconque des revendications 1 ou 2, caractérisé en ce qu'il comprend les moyens de détermination du niveau d'expression de la combinaison des gènes cibles suivants : PR-1, PR-2, PR- 4, PR-5, PR-8, PR-14, PR-15, PAL, CHS, DFR, ANS, PPO, HMGR, FPPS, Far, CSL, APDX, GST, PDX, CaIS, Pect, CAD, EDS1, WRKY, LOX2, JAR, ACCO, EIN3. 4.- Dispositif selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisé en ce que lesdits moyens de détermination du niveau d'expression d'un gène cible sont choisis parmi (i) les fragments d'acide nucléique capables de s'hybrider de manière spécifique aux ARNm exprimés par ledit gène cible ou aux ADNc correspondants, ou à des fragments desdits ARNm ou desdits ADNc, et/ou (ii) les anticorps se liant spécifiquement aux produits d'expression dudit gène cible, desdits ARNm ou desdits ADNc, ou fragments desdits produits d'expression. 5.- Dispositif selon la revendication 4, caractérisé en ce que les fragments d'acide nucléique consistent en des amorces nucléotidiques s'hybridant spécifiquement avec les ARNm, les ADNc, ou des fragments de ceux-ci. 6.- Dispositif selon la revendication 5, caractérisé en ce que lesdites amorces nucléotidiques sont adaptées à la détermination du niveau d'expression des gènes cibles par une méthode de PCR quantitative. 7.- Dispositif selon la revendication 6, caractérisé en ce que les amorces sont choisies parmi les séquences suivantes SEQ ID n°32 à 87. 8.- Dispositif selon la revendication 4, caractérisé en ce que lesdits fragments d'acide nucléique ou lesdits anticorps sont immobilisés sur un support. 9.- Dispositif selon la revendication 8, caractérisé en ce qu'il consiste en une puce à ADN. 10.- Procédé pour identifier un profil d'expression d'une combinaison de gènes cibles permettant de déterminer, ou au moins d'évaluer, un état de stimulation des défenses naturelles de plantes ou de parties de plantes, lequel procédé comprend les étapes suivantes : (i) déterminer le profil d'expression d'une combinaison de gènes cibles au moyen du dispositif selon l'une des revendications 1 à 9, sur un ensemble de plantes ou de parties de plantes, dont l'état de stimulation de leurs défenses naturelles est connu, puis (ii) déterminer un profil d'expression de ladite combinaison de gènes cibles correspondant à un état déterminé de stimulation des défenses naturelles desdites plantes ou parties de plantes, partant des données issues de l'étape (i). 11.- Procédé pour déterminer ou évaluer l'état de stimulation des défenses naturelles d'une plante ou d'une partie de plante, comprenant les étapes suivantes : (i) prélever un échantillon à partir de ladite plante ou de ladite partie de plante, (ii) déterminer le profil d'expression d'une combinaison de gènes cibles dans ledit échantillon prélevé à l'étape (i), au moyen du dispositif selon l'une des revendications 1 à 9, (iii) comparer le profil d'expression obtenu à l'étape (ii) avec un profil d'expression de référence, (iv) déterminer ou évaluer l'état de stimulation des défenses naturelles de ladite plante ou de ladite partie de plante, à partir dudit profil d'expression obtenu lors de l'étape (ii). 12.- Procédé pour sélectionner une substance ayant la propriété de moduler l'état de stimulation des défenses naturelles d'une plante ou d'une partie de plante, comprenant les étapes suivantes : (i) mettre en contact ladite plante ou ladite partie de plante avec la substance à tester, (ii) déterminer le profil d'expression d'une combinaison de gènes cibles dans un échantillon prélevé à partir de ladite plante ou de ladite partie de plante suite à l'étape (i), au moyen du dispositif selon l'une des revendications 1 à 9,(iii) comparer le profil d'expression obtenu à l'étape (ii) avec un profil d'expression de référence, pour déterminer ou évaluer l'état de stimulation des défenses naturelles dans ledit échantillon, (iv) sélectionner positivement ladite substance si la comparaison à l'étape (iii) montre que ladite substance testée à l'étape (i) module l'état de stimulation des défenses naturelles de ladite plante ou de ladite partie de plante. 13.- Procédé selon la revendication 12, pour sélectionner une substance ayant la propriété de générer un état de stimulation des défenses naturelles d'une plante ou d'une partie de plante appartenant à la famille des 1 o Rosaceae, assurant une protection vis à vis d'un stress biotique, caractérisé en ce que le profil d'expression de référence à l'étape (iii) correspond aux valeurs observées pour des échantillons de plantes ou de parties de plantes non soumises à un stress ou un stimulateur des défenses naturelles, et en ce que l'étape (iv) consiste à sélectionner positivement ladite substance testée 15 si le profil d'expression obtenu à l'étape (ii), et comparé à l'étape (iii), montre une surexpression de la combinaison de gènes cibles suivantes : PR-1, PR-2, PR-4, PR-5, PR-8, PR-14, HMGR, Far, CSL, PDX, Pect, EDS1 et WRKY. 14.- Procédé pour sélectionner une plante présentant un état de stimulation des défenses naturelles susceptible de leur conférer une 20 résistance améliorée à au moins un stress biotique et/ou abiotique d'intérêt, comprenant les étapes suivantes : (i) appliquer ledit ou lesdits stress à une plante ou une partie de plante, (ii) déterminer le profil d'expression d'une combinaison de gènes cibles dans un échantillon prélevé à partir de la plante ou de ladite partie de plante, au 25 moyen du dispositif selon l'une des revendications 1 à 9, (iii) comparer le profil d'expression obtenu à l'étape (ii) avec un profil d'expression de référence, pour déterminer ou évaluer l'état de stimulation des défenses naturelles dans ledit échantillon, (iv) sélectionner positivement ladite plante ou ladite partie de plante si la 30 comparaison de l'étape (iii) montre que ladite plante ou ladite partie de plante possède un état de stimulation des défenses naturelles susceptible de leur conférer une résistance améliorée à au moins un stress biotique et/ou abiotique d'intérêt. 15.- Procédé selon l'une quelconque des revendications 10 à 14, caractérisé en ce que la ou les plantes appartiennent à la famille des Rosaceae.5