Brevet FR2966843A1 — publié le 20120504

PROCEDE DE DECONTAMINATION D'HYDROLYSATS D'AMIDON POUR LA PREPARATION DE POLYMERES DE GLUCOSE DESTINES A LA DIALYSE PERITONEALE La présente invention se rapporte à un procédé de décontamination des hydrolysats d'amidon à partir desquels seront préparés des polymères de glucose destinés à la fabrication de solutions pour dialyse péritonéale. On entend au sens de l'invention par « procédé de décontamination », un procédé qui permet de débarrasser les hydrolysats d'amidon de microorganismes contaminants (microorganismes vivants et/ou sporulés de type levures, moisissures et bactéries) et de substances susceptibles d'occasionner des péritonites (aseptiques ou non), complications majeures de la dialyse péritonéale, ces substances pouvant être : les lipopolysaccharides (LPS), complexes macromoléculaires toxiques présents de manière constitutive dans la membrane externe de toutes les bactéries à Gram négatif. Sur le plan structural, les LPS sont constitués d'un lipide A et d'une partie polysaccharidique débordant la membrane externe. Le lipide A est doué de propriétés toxiques et il correspond à l'endotoxine des bactéries à Gram négatif qui n'est libérée, de manière massive, qu'après lyse de la bactérie. - des R-glucanes, polymères de D-glucose liés par des liaisons R-glucosidiques. Les R-glucanes sont un groupe diversifié de molécules, de masse moléculaire, solubilité, viscosité, et configuration tridimensionnelles variables. Les R-glucanes sont notamment constitutifs de la paroi cellulaire des cellules végétales, des levures et de certaines moisissures et bactéries, - des peptidoglycanes (PGs), composants polysaccharidiques des parois des bactéries Gram (+). Encore appelés muréines, ou mucocomplexes, ou mucopeptides, les petidoglycanes sont formés d'une partie polysaccharide et d'une partie peptidique. Le polysaccharide est un polymère de glycosaminopeptide où la N-acétyl-glucosamine et l'acide N-acétyl-muramique sont liés par des liaisons osidiques R 1-4. L'invention porte plus particulièrement sur la modification de la conduite des procédés classiques de production des hydrolysats d'amidon, au sens où sont ajoutées audits procédés classiques des étapes de filtration en série ou des étapes de traitement au charbon actif particulier, couplées ou non à des étapes de traitement enzymatique. Ces étapes supplémentaires visent donc à garantir l'innocuité des hydrolysats d'amidon ainsi préparés, i.e. garantir une teneur en substances contaminantes bien inférieure au seuil de quantification des méthodes classiques de dosage desdites substances contaminantes. La dialyse péritonéale est un type de dialyse qui a pour objectif d'éliminer les déchets tels que l'urée, la créatinine, l'excès de potassium ou l'excédent d'eau que les reins ne parviennent pas ou plus à épurer du plasma sanguin. Ce traitement médical est indiqué en cas d'insuffisance rénale chronique terminale. C'est une épuration intracorporelle qui utilise le péritoine comme membrane de dialyse. Les déchets toxiques du sang traversent la membrane semi-perméable du péritoine, vers une solution appelée dialysat. Le dialysat est introduit dans la cavité péritonéale par un cathéter permanent. Il existe deux types de dialyse péritonéale : - La DPCA (dialyse péritonéale continue ambulatoire), traitement qui se base sur le passage de 4 poches de dialysat par jour selon prescription médicale - La DPA (dialyse péritonéale automatisée), traitement 30 nocturne continu qui correspond à environ 15 litres de dialysat par 8 heures selon prescription médicale. Les dialysats les plus couramment utilisés sont composés d'une solution tampon (du lactate ou du bicarbonate) à pH acide (5,2 - 5,5) ou physiologique (7,4) à laquelle sont ajoutés des 35 électrolytes (sodium, calcium, magnésium, chlore) et un agent osmotique (du glucose ou un polymère de glucose, tel que l'« icodextrine » présent dans la solution pour dialyse péritonéale ambulatoire EXTRANEAL® commercialisée par la société BAXTER). Les électrolytes et l'agent osmotique jouent chacun un rôle dans le mécanisme d'échange, selon leurs propriétés 5 physico-chimiques respectives : - les déchets du métabolisme (tels que l'urée ou la créatinine) ou autres électrolytes en surabondance que le rein n'élimine plus ou insuffisamment via l'appareil urinaire et les urines, vont s'extraire du plasma sanguin par diffusion des 10 éléments vers le dialysat dont les taux de concentration de ces mêmes éléments sont moindres ; - l'excédent d'eau, que le rein élimine normalement pour la régulation du volume plasmatique, va être attiré par osmolarité en fonction de la concentration du dialysat en 15 glucose ou en polymère de glucose plus la solution sera concentrée, plus l'eau présente dans le corps sera captée par le dialysat. Le polymère de glucose, tel l'icodextrine mentionné ci-avant, est préféré au glucose comme agent osmotique, car bien 20 que le glucose ait l'avantage d'être relativement sûr et peu coûteux, il a un certain nombre d'inconvénients. En raison de sa petite taille, le glucose qui traverse rapidement le péritoine mène à la perte de gradient osmotique dans les 2 à 4 heures d'infusion. 25 Les caractéristiques d'ultrafiltration des solutions de dialyse péritonéale sont donc considérées meilleures en remplaçant le glucose par des substances de haut poids moléculaire, tels que des polymères de glucose, comme il sera démontré ci-après. 30 Les polymères de glucose standards sont produits par hydrolyse acide ou enzymatique d'amidon de céréales ou de tubercules. L'hydrolyse acide de l'amidon, totalement aléatoire, ou son hydrolyse enzymatique un peu plus ordonnée, fournissent des 35 mélanges de glucose (monomère) et des chaînes de glucose qui comportent des molécules très courtes (oligomères), de faible Degré de Polymérisation (ou D.P.), aussi bien que des molécules très longues (polymères), de D.P. élevé. Les polymères de glucose ont par ailleurs un poids moléculaire extrêmement varié. Dans le domaine plus particulier de l'utilisation des polymères du glucose destinés à la dialyse péritonéale continue et ambulatoire, il est très vite apparu que ces hydrolysats d'amidon (mélange de glucose, d'oligomères et de polymères de glucose) ne pouvaient pas être utilisés tels quels. La demande de brevet européen EP 207.676 enseigne qu'il est préféré des polymères de glucose formant des solutions limpides et incolores à 10 % dans l'eau, ayant un poids moléculaire moyen en poids (Mw) de 5.000 à 100.000 daltons et un poids moléculaire moyen en nombre (Mn) inférieur à 8.000 daltons. De tels polymères de glucose comprennent aussi de façon préférée au moins 80 % de polymères du glucose dont le poids moléculaire est compris entre 5.000 et 50.000 daltons, peu ou pas de glucose ou de polymères du glucose de DP inférieur ou égal à 3 (poids moléculaire 504) et peu ou pas de polymères de glucose de poids moléculaire supérieur à 100.000 (DP voisin de 600). En d'autres termes, les polymères de glucose préférés sont des polymères de glucose de faible indice de polymolécularité (valeur obtenue en calculant le rapport Mw/Mn). On conçoit en effet aisément pour cette application que les monomères ou polymères de faible poids moléculaire traversent rapidement la paroi péritonéale et sont ainsi sans intérêt durable pour la création d'un gradient de pression osmotique, et que les polymères de très haut poids moléculaire, dénués de pouvoir osmotique, sont à éviter et même à proscrire puisque potentiellement dangereux s'il leur advenait de précipiter consécutivement à leur rétrogradation. Les procédés proposés dans cette demande de brevet EP 207.676 pour obtenir ces polymères de glucose de faible indice de polymolécularité à partir d'hydrolysats d'amidon consistent : - soit à effectuer une précipitation fractionnée d'une maltodextrine à l'aide d'un solvant miscible à l'eau, - soit à effectuer une filtration moléculaire de cette même maltodextrine au travers de différentes membranes possédant un seuil de coupure ou d'exclusion adéquat. Dans les deux cas, ces procédés visent à éliminer à la 5 fois les polymères de très haut poids moléculaire et les monomères ou oligomères de faible poids moléculaire. Ces procédés ne donnent toutefois pas satisfaction tant du point de vue de leur mise en oeuvre que du point de vue des rendements et de la qualité des produits qu'ils permettent 10 d'obtenir. Soucieuse de mettre au point un procédé de fabrication d'un polymère de glucose complètement soluble dans l'eau et de faible indice de polymolécularité préférentiellement inférieur à 2,5, ayant de préférence un Mn inférieur à 8.000 daltons et 15 possédant un Mw compris entre 12.000 et 20.000 daltons, procédé qui soit dépourvu des inconvénients de l'art antérieur, la société Demanderesse, s'est attachée à résoudre ce problème dans son brevet EP 667.356, en partant d'un amidon hydrolysé, plutôt que d'une maltodextrine. 20 Ce procédé consiste à : - hydrolyser par voie acide un lait d'amidon cireuxjusqu'à un D.E. compris entre 8 et 15 ; - éventuellement compléter cette hydrolyse acide par une hydrolyse enzymatique à l'aide d'alpha-amylase bactérienne 25 jusqu'à un D.E. compris entre Il et 18 ; - chromatographier sur résines cationiques fortes macroporeuses sous forme alcaline ou alcalino-terreuse cet hydrolysat double acide-enzyme ; - collecter le polymère de glucose exclu lors de cette 30 étape de chromatographie. Dans ce brevet, pour obtenir un polymère de glucose présentant un indice de polymolécularité inférieur à 2,5, il est collecté le polymère de glucose exclu lors de cette étape de chromatographie dans un rendement pondéral de l'ordre de 60 % de 35 1'hydrolysat d'amidon mis en oeuvre en amont de l'étape de chromatographie. Ce polymère de glucose contient alors de préférence moins de 3 % de glucose et de polymères de glucose de DP inférieur ou égal à 3 et moins de 0,5 % de polymères de glucose de DP supérieur à 600. I1 est finalement désormais admis par les experts du domaine de la dialyse péritonéale que ces polymères de glucose, utilisés pour leur pouvoir osmotique, donnent toute satisfaction. I1 est cependant à déplorer des risques de contamination microbienne de ces préparations destinées à la dialyse péritonéale. Par exemple, le cathéter implanté dans la cavité péritonéale est une porte d'entrée propice aux germes. Les nombreuses manipulations sur le cathéter lors des phases d'infusion et de drainage augmentent le risque d'infection locale ou générale. En outre, un facteur de risque supplémentaire de contamination peut être directement lié aux impuretés qui peuvent polluer les polymères de glucose utilisés comme agents osmotiques. I1 est en effet connu que les circuits de production des polymères de glucose peuvent être contaminés des microorganismes, ou par des substances pro-inflammatoires contenus dans lesdits microorganismes. I1 est par exemple décrit en amidonnerie la contamination des amidons de maïs ou de blé par des microorganismes de type levures, moisissures et bactéries, et plus particulièrement par des bactéries acidothermophiles de type Alicyclobacillus acidocaldarius (bactéries extrémophiles qui se développent dans les zones chaudes et acides du circuit). Le risque majeur pour le patient qui reçoit ces produits 30 contaminés est alors la péritonite. Le soupçon clinique de la péritonite est diagnostiqué lors du développement d'un trouble dans le dialysat associé avec les manifestations cliniques variables que sont la douleur abdominale, la nausée, le vomissement, la diarrhée et la fièvre. 35 Ces épisodes de péritonite sont provoqués par des infections bactériennes intrapéritonéales, et le diagnostic est habituellement facilement établi par les cultures positives de dialysat. La « péritonite stérile », également décrite en tant que péritonite aseptique, chimique, ou culture-négative, est quant à elle typiquement provoquée par un irritant chimique ou un corps étranger. Depuis l'introduction de l'icodextrine pour la préparation de solutions de dialyse péritonéale, des cas isolés de péritonite aseptique ont été rapportés, pouvant être liés à des causes diverses et notamment l'induction par des substances pro-inflammatoires potentiellement présentes. Or, ces substances proinflammatoires ne sont pas détectées par les tests habituellement effectués pour déterminer l'innocuité de telles préparations. Les tests décrits aujourd'hui dans les Pharmacopées pour la détection de substances pyrogènes sont en effet les 15 suivants . Le test dit LAL, de détection des endotoxines bactériennes (LPS), composants majoritaires des bactéries Gram négatives, - Le test pyrogène lapin, de détection des endotoxines 20 bactériennes (LPS) ainsi que les R glucanes, composants des parois de flores fongiques (levures et moisissures). Bien que généralement fiables, ces deux tests présentent leurs limites. Le test pyrogène lapin est fondé sur la détection 25 indirecte de substances pyrogènes par la mesure d'une élévation de température du lapin auquel a été injecté le produit contenant ces substances (réponse fébrile). Ce test peut donner lieu à des faux négatifs, si la substance indésirable présente une activité biologique trop 30 faible ou une concentration trop basse pour induire une réponse systémique pyrogène. Cependant, cette substance peut posséder une activité biologique ou concentration suffisante pour produire une réaction inflammatoire locale. 35 Les autres impuretés biologiques (ADN,...) ne sont pas détectées. Il en est de même pour les peptidoglycanes, composants majoritaires des membranes cellulaires des bactéries Gram positives. La manifestation des péritonites aseptiques observées avec les solutions de dialyse péritonéale contenant de l'icodextrine témoigne donc, pour certains cas, de la façon dont certaines substances peuvent échapper aux tests décrits dans les pharmacopées et peuvent être à l'origine d'effets cliniques indésirables. Pour remédier à cette situation, la société BAXTER a proposé de placer les efforts dans la détection des contaminants microbiens Gram positifs dans ses solutions pour dialyse péritonéales, ou directement sur les polymères de glucose purifiés destinés à rentrer dans la composition desdites solutions pour dialyse péritonéale. En particulier, dans son brevet EP 1.720.999, la société BAXTER propose de développer une méthode basée sur la détection 15 des peptidoglycanes. Cette détection est alors préconisée directement sur les préparations pour dialyse péritonéale, ou sur les polymères de glucose purifiés. Cette méthode consiste à réaliser sur les polymères de 20 glucose : un essai de « biocharge » pour détecter le microorganisme Gram positif thermophile acidophile Alicyclobacillus acidocaldarius, puis - une stérilisation desdits polymères de glucose, puis 25 un test consistant à ajouter un réactif capable de réagir avec les peptidoglycanes pour induire une réaction en cascade de sérine-protéase, - une quantification desdits peptidoglycanes. En d'autres termes, la première étape détecte la présence 30 de microorganismes vivants susceptibles d'avoir contaminé le circuit de purification des polymères de glucose, la seconde, par stérilisation, les élimine et la troisième détecte les peptidoglycanes issus des débris cellulaires non éliminés par l'étape précédente de stérilisation. 35 S'il est déterminé que la quantité de ces peptidoglycanes recherchée dans les polymères de glucose est bien inférieure à un certain seuil (10 ng/ml d'une solution à 7,5% de polymère de glucose, soit 133 ng/g de polymères de glucose), ces polymères de glucose sont alors utilisés pour préparer la solution de dialyse péritonéale proprement dite. En d'autres termes, pour empêcher la survenue de ces épisodes de péritonites aseptiques, la société BAXTER, dans son brevet EP 1.720.999, propose d'assurer le contrôle de la fabrication et l'usage des solutions de dialyse péritonéale, à l'aide d'un protocole de détection de peptidoglycanes dans la solution de dialyse péritonéale. La société BAXTER a également proposé pas moins de quatre autres procédés pour détecter ou éviter la présence de peptidoglycanes dans les composants destinés à la fabrication de solutions pour dialyse péritonéale, ou dans les solutions pour dialyse péritonéale en tant que telles : Dans sa demande de brevet internationale WO 2009/117302, la société BAXTER décrit l'élimination des substances contaminantes par passage sur résine échangeuse d'ions. Il est cependant à déplorer que cette technologie n'est que partiellement efficace, les inventeurs reconnaissant eux-mêmes que la finalité de cette adsorption sur résine est de « réduire » le risque de contamination, car elle ne retient qu'une « portion » des contaminants microbiens présents aussi bien dans les polymères de glucose que dans la solution finale pour dialyse péritonéale. Il est même recommandé de passer les polymères de glucose ou la solution pour dialyse péritonéale sur plusieurs résines échangeuses d'ions en série, ce qui constitue un procédé de décontamination particulièrement lourd. Un test de détection des peptidoglycanes est d'ailleurs mis en oeuvre (analyse IL6) pour vérifier l'innocuité des solutions ainsi obtenues. Dans sa demande de brevet internationale WO 2009/117303, il est proposé une méthode de détection des peptidoglycanes dans les polymères de glucose ou directement dans la préparation pour dialyse péritonéale comprenant la détermination de la réponse aux IL-6 établie en fonction d'une concentration en substance pro-inflammatoire prise comme référence, et l'établissement d'une courbe dose/réponse de la réponse aux IL6 en regard de diverses concentrations en substances pro-inflammatoires. Cette méthode constitue donc un perfectionnement de la méthode de détection développée dans la demande de brevet EP 1.720.999. Cette méthode nécessite cependant d'utiliser les cellules productrices d'IL6 isolées de sujets humains hypersensibles aux substances pro-inflammatoires particulières, en l'occurrence aux peptidoglycanes. Une fois encore, cette méthode de diagnostic permet de rejeter les lots contaminés avec une grande sensibilité, mais ne 10 permet pas de prévenir ladite contamination. Dans sa demande brevet internationale WO 2009/117304, il s'agit de filtrer la solution de polymère de glucose ou la préparation pour dialyse péritonéale sur membrane d'ultrafiltration présentant un seuil de coupure de 30 kDa. 15 BAXTER aurait ainsi établi que la taille des contaminants comprise entre 30 et 100 kDa serait plus probablement celle qui cause les péritonites aseptiques, tandis que les contaminants de taille plus petite n'auraient aucun effet néfaste. Le procédé décrit par BAXTER dans cette demande de brevet 20 consiste donc à filtrer toute solution de polymère de glucose ou préparation destinée à la dialyse péritonéale sur cette membrane d'ultrafiltration et de tester, à l'aide du même test de détection que celui décrit dans la demande de brevet WO 2009/117303, le rétentat et le filtrat ainsi obtenu. 25 Le principe est le suivant : On élimine les solutions de polymère de glucose si, après ultrafiltration, le rétentat provoque une réaction pro-inflammatoire et que le filtrat n'en provoque pas ; On gardera par contre les solutions de polymère de glucose 30 si le rétentat et le filtrat provoquent une réaction pro-inflammatoire et que la réponse du filtrat est supérieure à celle du rétentat. Si le rétentat et le filtrat provoquent une réaction pro-inflammatoire et que la réponse du filtrat est inférieure à 35 celle du rétentat, on examine la nature de la réponse du filtrat : - si la réponse du filtrat est de 50 % et plus égale à celle du rétentat, on garde les solutions, - si la réponse du filtrat est moins de 50 % de celle du rétentat, on rejette les solutions. Cette méthode n'est cependant pas satisfaisante, car elle se base sur le postulat de la non innocuité des fragments de petite taille, et de ce fait, aucune technique n'est proposée pour les éliminer. Dans sa demande de brevet 2009/117558, BAXTER agit par le biais d'enzymes de dégradation des composants des parois cellulaires des contaminants microbiens. Ces enzymes, tel le lysozyme, utilisées sous forme soluble ou immobilisée, sont mises en oeuvre seules ou en combinaison avec d'autres enzymes de dégradation des contaminants microbiens, et le polymère de glucose ou la préparation pour dialyse ainsi traités sont testés pour leur réponse aux cytokines. Ce traitement enzymatique sur le produit final ou sur la préparation pour dialyse sera alors réellement prescrit aux patients si aucune réponse aux cytokines n'est détectée. Cependant, une fois encore, rien n'est proposé pour éliminer les débris des composants des parois cellulaires ainsi hydrolysés, ni pour éliminer les substances qui contaminent naturellement les préparations enzymatiques utilisées. De tout ce qui précède, il résulte qu'aucune solution technique pour sécuriser les polymères de glucose destinés à la préparation de solution pour dialyse péritonéale, ou pour sécuriser la solution pour dialyse péritonéale en tant que telle, n'est complètement satisfaisante. Il est du mérite de la Société Demanderesse d'avoir trouvé que la solution doit reposer avant tout sur le contrôle de la qualité de la matière première mise en oeuvre pour la préparation des polymères de glucose destinées à la préparation de solution pour dialyse péritonéale, i.e. de proposer un procédé simple et efficace d'élimination des contaminants des hydrolysats d'amidon en tant que tels. En d'autres termes, il s'agit d'agir sur le problème de contamination à sa source, et pas seulement sur les produits finaux ou sur la solution finale pour dialyse péritonéale. La présente invention se rapporte donc à un procédé de préparation de polymères de glucose destinés à la fabrication de solutions pour dialyse péritonéale, procédé qui comprend la décontamination des hydrolysats d'amidon à partir desquels seront préparés lesdits polymères de glucose. Cette décontamination vise à garantir la production d'hydrolysats d'amidon ne devant pas présenter de contaminants résiduels, i.e. garantir des teneurs inférieures ou égales aux valeurs suivantes, i.e. - pour les microorganismes vivants : flore mésophile totale : Le résultat est exprimé en ng/ml de solution à 5 % testée puis en ng/g de polymère de glucose. Dans un premier mode préférentiel du procédé conforme à l'invention, ledit procédé de décontamination d'un hydrolysat d'amidon, pour la préparation de polymères de glucose destinés à la dialyse péritonéale, est caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes . 1) préparer un hydrolysat d'amidon, 2) filtrer ledit hydrolysat d'amidon de manière à éliminer tout contaminant présentant la taille d'un microorganisme de type levures, moisissures ou bactéries, 3) traiter ledit hydrolysat d'amidon ainsi débarrassé des microorganismes contaminants par des enzymes de dégradation des constituants polysaccharidiques des parois cellulaires choisies dans le groupe constitué du lysozyme et de la laminarinase, de préférence la laminarinase, 4) ultrafiltrer l'hydrolysat d'amidon ainsi traité 5 enzymatiquement, 5) traiter l'hydrolysat d'amidon ainsi obtenu sur charbon actif à haute capacité d'adsorption, 6) collecter l'hydrolysat d'amidon ainsi décontaminé. Dans la première étape de cette première variante du 10 procédé conforme à l'invention, l'hydrolysat d'amidon peut être préparé : - soit par hydrolyse classique par voie enzymatique ou chimique de l'amidon de diverses sources végétales telles le blé, maïs, pomme de terre, pois, riz, manioc... de manière à 15 atteindre un équivalent Dextrose (DE) inférieur à 20, caractéristique des maltodextrines, - soit par hydrolyse par voie acide d'un lait d'amidon cireuxjusqu'à un D.E. compris entre 8 et 15 éventuellement complétée par une hydrolyse enzymatique à l'aide d'alpha-amylase 20 bactérienne jusqu'à un D.E. compris entre 11 et 18, selon l'enseignement du brevet EP 667.356 évoqué ci-dessus. Pour tester la robustesse de son procédé de décontamination, comme il sera exemplifié ci-après, la société Demanderesse dispose d'hydrolysats d'amidon de maïs ou de 25 maltodextrines contaminés artificiellement ou non : - par les 4 catégories de contaminants présentés ci-dessus, - par des peptidoglycanes (sous forme libre ou liée, i.e. à 1a surface de cellules vivantes) avec ou sans endotoxines, 30 - par des R-glucanes et des peptidoglycanes, avec ou sans endotoxines. Dans la deuxième étape de cette première variante du procédé conforme à l'invention, il est procédé à l'élimination des microorganismes susceptibles de contaminer lesdits 35 hydrolysats d'amidon, i.e. levures, moisissures et bactéries, et notamment les bactéries acidothermophiles de type Alicyclobacillus acidocaldarius, leur taille étant supérieure aux diamètres des pores de filtration. Toute méthode connue en soi de l'homme du métier est utilisable, mais la société Demanderesse recommande de mettre en oeuvre : - soit une filtration stérilisante qui consiste principalement en une filtration membranaire de diamètre de pore de 0,22 um, précédé le cas échéant d'une préfiltration membranaire d'un diamètre de pore de 0,45 }gym. La filtration est réalisée par plusieurs filtres à cartouches insérées dans un carter vertical vers lequel l'hydrolysat d'amidon est dirigé. Ces filtres à cartouches sont fournis par les sociétés PALL ou MILLIPORE. La taille des cartouches peut être de 10, 20 ou 30 pouces, et le nombre de cartouches installées permet d'obtenir une surface de filtration suffisante afin de passer un débit de produit entre 1 et 20 1/minutes/m'. Ces filtres à cartouches ont des capacités de résistance pour un travail en continu à haute température, de l'ordre de 75°C et pour passer le débit précédemment cité durant une période supérieure de 700 h. Le fait de travailler à une température de 75°C permet de limiter tout développement microbiologique, notamment des flores thermophiles. Leur résistance à la température permet également de réaliser une stérilisation avant leur mise en service. Cette stérilisation consiste à faire passer de la vapeur 2 bar à travers le carter pendant une période de 20 minutes. Cette stérilisation est suivie par un rinçage à l'eau purifiée pendant une période de 5 minutes. Ces filtres possèdent également des capacités de résistance à certains produits chimiques utilisés pour le 30 nettoyage des équipements, et notamment l'acide peracétique à une concentration de 5°/00. Un test d'intégrité est réalisable sur ces cartouches à l'aide d'un intégritest de la société MILLIPORE par exemple. Ce test d'intégrité est réalisé à la mise en place des cartouches 35 afin d'en vérifier le montage. Ce test est ensuite réalisé avant chaque nettoyage des équipements et enfin avant le démontage afin de valider leur bon fonctionnement durant la phase de production. Le delta de pression (4P) de travail de ces filtres ne doit pas dépasser les 2 bar afin de garantir leur intégrité. Si tel est le cas, ces filtres doivent être remplacés par de nouveaux. soit une ultrafiltration sur membrane présentant un seuil de coupure de 300.000 Da. Le seuil de coupure est ainsi choisi de manière à retenir les contaminants cellulaires éventuels dans le rétentat. Le seuil de coupure permet de retenir les microorganismes, i.e. levures, moisissures et bactéries et notamment les bactéries acidothermophiles de type Alicyclobacillus acidocaldarius. La surface du filtre est déterminée en fonction de la nature du fluide et du débit à traiter. Les membranes d'ultrafiltration peuvent être de type céramique ou organique. Ces deux types de membranes ayant une résistance différente à la température et aux produits chimiques, il sera préféré les membranes de type céramiques qui permettent de travailler à des températures supérieures à 75°C. Leur résistance à la température permet de réaliser une stérilisation à la vapeur avant leur mise en service. Cette stérilisation consiste à faire passer de la vapeur 2 bar à travers le carter pendant une période de 20 minutes. Cette stérilisation est suivie par un rinçage à l'eau purifiée pendant une période de 20 minutes. Il convient également de travailler à une température de l'ordre de 75°C pour éviter tout développement microbiologique. Ces filtres possèdent également des capacités de résistance à certains produits chimiques utilisés pour le nettoyage des équipements, et notamment l'acide peracétique à une concentration de 5 et la soude à une concentration de 1%. La pression de l'hydrolysat d'amidon en alimentation est comprise entre 2 et 20 bar et est régulée par la pompe alimentant ce module. Dans le cas où la pression maximale est atteinte mais que le débit de l'hydrolysat d'amidon est trop faible, il convient de réaliser un nettoyage à la soude des membranes afin qu'elles retrouvent une pleine efficacité. Le suivi de l'abaissement du taux de contaminants peut être analysé en faisant des prélèvements périodiques sur le perméat. Une élimination efficace des microorganismes sera considérée si les prélèvements sur le filtrat présentent un taux inférieur au seuil de quantification des méthodes classiques de dosage. Dans la troisième étape de cette première variante du procédé conforme à l'invention, il est procédé au traitement dudit hydrolysat d'amidon ainsi débarrassé des microorganismes contaminants par des enzymes de dégradation des constituants polysaccharidiques des parois cellulaires choisies dans le groupe constitué du lysozyme et de la laminarinase, de préférence la laminarinase. Après l'élimination des microorganismes vivants, cette étape permet donc d'éliminer les molécules toxiques résiduelles (libérés par les microorganismes ou encore présents dans les débris de membranes cellulaires). Ces enzymes de dégradation des constituants polysaccharidiques des parois cellulaires sont choisies de manière à rompre les membranes des deux germes contaminants majeurs des hydrolysats d'amidon (levures et bactéries Gram (+)) qui auraient pu échapper à l'étape de filtration précédente, et surtout pour hydrolyser leurs R-glucanes et peptidoglycanes qui peuvent se présenter sous forme libre dans lesdits hydrolysats d'amidon. La laminarinase présente une activité endo-R-1,3 glucanase (EC 3.2.1.6), qui détruit la paroi cellulaire des levures et de certaines moisissures. Le lysozyme, hydrolase acide (EC 3.2.1.17), détruit la paroi bactérienne des bactéries gram(+) en catalysant l'hydrolyse des glycosaminoglycanes la constituant. Il hydrolyse les liaisons covalentes entre l'acide N-acétyl-muramique avec le 4e atome de carbone du N-acétyl-glucosamine des peptidoglycanes. Le "squelette" du peptidoglycane de la paroi bactérienne est en effet un copolymère constitué de l'enchaînement covalent de ces 2966843 1.8 deux molécules, en alternance, sur lesquelles sont fixés des peptides qui pontent les chaînes du polymère. Ces enzymes sont introduites dans les hydrolysats d'amidon à la concentration de 0.001 oa à 1 % sur sec en poids 5 d'hydrolysats d'amidon, de préférence compris entre 0,1 % à 0,5 %. La laminarinase est mise en oeuvre sur les hydrolysats d'amidon à 1a% de matière sèche à une température de 50°C, à un pH de 4,6, pendant 5 à 24 heures, de préférence pendant 20 10 heures, comme il sera exemplifié ci-après. Le lysozyme est quant à lui mis en oeuvre sur les hydrolysats d'amidon à 1o% de matière sèche à une température de 37°C, à un pH de 7, pendant 5 à 24 heures, de préférence pendant 20 heures, comme il sera exemplifié ci-après. 15 Dans la quatrième étape de cette première variante du procédé conforme à l'invention, il est procédé à une ultrafiltration tangentielle de l'hydrolysat d'amidon ainsi traité enzymatiquement. Le seuil de coupure de la membrane d'ultrafiltration est 20 choisi de manière à retenir les éventuels produits de dégradation des P-glucanes et de peptidoglycanes dans le rétentat et permet surtout de retenir les enzymes mises en oeuvre à l'étape précédente. La membrane d'ultrafiltration présente alors un seuil de 25 coupure compris entre 20.000 et 50.000 daltons, de préférence de l'ordre de 30.000 daltons. Dans la cinquième étape de cette première variante du procédé conforme à l'invention, il est procédé à un passage de l'hydrolysat d'amidon ainsi obtenu sur charbon actif à haute 30 capacité d'adsorption. La société Demanderesse recommande de prendre un soin tout particulier à la mise en oeuvre de cette étape de traitement au charbon actif, qui constitue une étape clef de cette première variante du procédé conforme à l'invention. 35 La société Demanderesse a en effet trouvé que le choix d'une qualité appropriée du charbon actif à utiliser dans cette étape de finition conditionne la quasi-absence des contaminants susceptibles d'être détectés dans les hydrolysats d'amidon ainsi traités (« quasi » s'entendant à des concentrations bien inférieures au seuil de quantification des méthodes classiques de dosage). Il est connu de l'homme du métier que le charbon actif est un matériau carboné inerte adsorbant constitué d'un réseau poreux développant une surface considérable pouvant atteindre jusqu'à 1.500 m2 par gramme de matière (les diamètres des pores variant entre 4 et 100.000 Angstrôms). Pour être efficace, un charbon actif doit donc avoir une certaine surface interne développée au sein de la structure poreuse sur laquelle viendront s'adsorber les impuretés que l'on souhaite éliminer. Pour modéliser cette capacité d'adsorption, l'homme du métier décrit habituellement le processus d'adsorption à l'aide d'une isotherme d'adsorption (isotherme de Langmuir, isotherme de Langmuir-Hinshelwood, isotherme BET ou isotherme de Freundlich). L'isotherme d'adsorption est une courbe qui représente la quantité d'impuretés adsorbées par unité de masse de charbon activé en fonction de la concentration résiduelle des impuretés en solution. Pour construire cette isotherme, on introduit des quantités connues et croissantes de charbon actif dans un volume de solution à traiter, et après un temps de contact donné, on mesure la concentration résiduelle d'impuretés adsorbées. La société Demanderesse recommande donc, en préambule de toute mise en oeuvre d'un charbon actif destiné ici à terminer la décontamination des hydrolysats d'amidon destinés à la préparation de polymères de glucose destinés à la dialyse péritonéale (cinquième étape de polishing), de choisir précisément la qualité du charbon actif en modélisant son isotherme d'adsorption. Il est ainsi réalisé un essai préliminaire pour choisir le charbon actif le plus efficace, essai qui consiste à tracer l'isotherme d'adsorption de Freundlich pour différentes qualités de charbon actif disponibles dans le commerce (voire même de tester différents lots d'un même type de charbon actif), en regard de leur capacité d'adsorption de quantités connues de contaminants de type endotoxines bactériennes et peptidoglycanes qui sont pris ici comme références. I1 s'agit donc de réaliser une qualification précise de tous les lots destinés à être utilisés dans cette étape clef de 5 finition des hydrolysats d'amidon. La société Demanderesse recommande de tester plus particulièrement ici 1a qualité de type « méso », i.e. présentant un indice de bleu de méthylène élevé ou 1a qualité de type « micro », i.e. présentant un indice d'iode élevé. 10 L'isotherme d'adsorption qui permet classiquement de déterminer la surface spécifique d'un charbon actif donné va donc être ici mise à contribution pour aider au choix du charbon actif qui permettra : - d'adsorber tous les produits de dégradation de R-15 glucanes et de petidoglycanes générés aux étapes précédentes, quelle que soit leur taille, - et surtout d'adsorber les endotoxines susceptibles de contaminer les hydrolysats d'amidon, et également les endotoxines apportées par les enzymes en oeuvre (aucune 20 préparation industrielle commercialisée de ces enzymes n'en est malheureusement dépourvue). Comme il sera exemplifié ci-après, le mode opératoire de la détermination de l'isotherme d'adsorption de Freundlich recommandé par la société Demanderesse consiste à mélanger 25 l'hydrolysat d'amidon entrant avec chaque lot de charbon actif {5 doses croissantes comprises entre 0,125 ô à 2 ô sur la matière sèche à traiter, i.e. 0,125 ô ; 0,25 â ; 0,5 % ; 1% et 2 %) à une température de 75°C pendant une heure. La température de 75°C est la température de mise en oeuvre 30 classique des charbons actifs du commerce, validée pour la cinétique d'adsorption. La durée d'une heure de temps de contact a été déterminée de manière à s'affranchir de la contrainte cinétique par rapport à la thermodynamique du système. 35 Quant au pH, il est fixé à une valeur de 4,5, car la société Demanderesse a déterminé que pour assurer une adsorption optimale des impuretés peptidoglycanes et endotoxines, il fallait préalablement conditionner l'échantillon d'hydrolysat d'amidon à une valeur de pH acide, i.e. de l'ordre 4,5. Comme il sera exemplifié ci-après, la qualité du charbon actif pour cette cinquième étape de finition a été identifiée comme un charbon actif de type « micro », d'indice d'iode élevé. Un charbon actif de type NOR= SX +, commercialisé par 1a société NORIT, est tout à fait adapté à cette qualité. Dans la dernière étape de ce premier mode préférentiel du procédé conforme à l'invention, l'hydrolysat d'amidon obtenu est l.0 alors collecté, et son contenu en contaminants analysé. Dans un deuxième mode préférentiel du procédé conforme à l'invention le procédé de décontamination d'un hydrolysat d'amidon pour la préparation de polymères de glucose destinés à la dialyse péritonéale est caractérisé en ce qu'il comprend les 15 étapes suivantes 1) préparer un hydrolysat d'amidon, 2) filtrer ledit hydrolysat d'amidon de manière à éliminer tout contaminant présentant la taille d'un microorganisme de type levures, moisissures ou bactéries, 20 3) traiter ledit hydrolyser d'amidon de manière à éliminer tout contaminant présentant la taille minimale de 50 Angstrdms à l'aide d'une technique choisie dans le groupe constitué du charbon actif, de la microfiltration frontale ou de l'ultrafiltration tangentielle, 25 4) traiter l'hydrolysat d'amidon ainsi obtenu sur charbon actif à haute capacité d'adsorption 5) collecter l'hydrolysat d'amidon ainsi décontaminé. Dans ce deuxième mode préférentiel du procédé conforme à l'invention, les deux premières étapes sont identiques à celles 30 précédemment décrites dans le premier mode préférentiel présenté ci-avant. Dans la troisième étape de ce deuxième mode préférentiel du procédé conforme à l'invention, il est procédé au traitement de l'hydrolysat d'amidon débarrassé des microorganismes 35 susceptibles de le contaminer à l'aide d'une technique choisie dans le groupe constitué du charbon actif, de la microfiltration frontale ou de l'ultrafiltration tangentielle. Cette étape est mise en oeuvre de manière à éliminer tous polysaccharides d'origine bactérienne, levures ou moisissures (LPS, R-glucanes, peptidoglycanes) de haut poids moléculaire. Comme première technique, il peut être choisi le traitement au charbon actif. De la même manière que décrit plus haut, la société Demanderesse recommande de choisir la qualité de charbon actif le plus efficace pour effectuer cette étape d'élimination des impuretés de grosse taille (débris de cellules vivantes de type endotoxines), à l'aide de la détermination de son isotherme d'adsorption. Comme il sera exemplifié ci-après, la qualité du charbon actif pour cette dernière étape a été identifiée comme un charbon actif de type « méso ». Un charbon actif de type ENO-PC, commercialisé par la société CECA, est tout à fait adapté à cette qualité. Par ailleurs, présentant des pores de diamètres compris entre 15 à 100 Angstrôms (appelés « mésopores »), ce charbon actif permet en outre de retenir les molécules de haut poids moléculaire (une porosité de 100 Angstrôms permet de retenir des poids moléculaires de l'ordre de 20 kDa). Comme seconde technique, il peut être choisi le traitement par microfiltration frontale. La microfiltration frontale est un procédé de filtration 25 qui consiste à faire passer le liquide à filtrer perpendiculairement à la surface du filtre. La microfiltration frontale est classiquement de 3 types : - la filtration frontale « neutre », présentant un seuil de coupure de 0,45 pm, de charge de surface neutre, 30 - la filtration frontale anionique, présentant également un seuil de coupure de 0,45 pm, de charges de surface positives, donc échange des molécules chargées négativement, - la filtration frontale cationique, présentant encore un seuil de coupure de 0,45 pm, de charges de surface négatives 35 donc échange des molécules chargées positivement. La société Demanderesse recommande de réaliser une filtration frontale à l'aide d'un système de filtration de potentiel Zeta plus (les peptidoglycanes présentant une charge négative à pH 7) d'une solution d'hydrolysats d'amidon dilués à 10 % de matière sèche. Comme troisième technique, il peut être choisi le traitement par ultrafiltration tangentielle. L'ultrafiltration tangentielle est classiquement un procédé de filtration où la force motrice est la pression du liquide à traiter. Le liquide pressurisée entre dans le module et le liquide produit (appelée filtrat ou perméat) traverse la barrière que 10 constitue la membrane. Les substances retenues peuvent être éliminées du module en mode batch ou continu, suivant le système utilisé, dans le concentrât ou dans un effluent de rétro lavage. Le seuil de coupure est dans le procédé conforme à 15 l'invention de l'ordre de 30.000 Da, ce qui permet la rétention de très petites particules. La structure poreuse des membranes utilisées présente une couche filtrante de très fine épaisseur où il y a les plus petits pores alors que le reste de l'épaisseur (plus de 100 pm) 20 ou couche support présente des pores de l'ordre de quelques microns qui assurent un passage facile du filtrat et donnent la résistance mécanique à l'ensemble. On réalise donc une filtration de surface et non en profondeur. 25 La société Demanderesse recommande de réaliser une ultrafiltration tangentielle en mode batch d'une solution d'hydrolysats d'amidon dilués à 10 % de matière sèche, à pH 4,5 à une température de 60°C, sur une membrane organique à cartouche PALL CENTRAMATE d'un seuil de coupure de 30.000 Da, de 30 manière à atteindre un Facteur de Concentration Volumique voisin de 10. Dans la quatrième étape de ce deuxième mode préférentiel du procédé conforme à l'invention, il est procédé au traitement de finition de ce procédé de décontamination, à l'aide de 35 charbon actif. L'analyse des capacités d'adsorption des charbons actifs mis en oeuvre a conduit la société Demanderesse à coupler préférentiellement, pour le traitement des hydrolysats d'amidon, deux types de charbon actif : de type « méso » puis « micro », dans le cas où la troisième étape de ce deuxième mode préférentiel selon l'invention consiste déjà en une étape de traitement au charbon actif. Ce deuxième traitement au charbon actif « microporeux » agit comme un traitement de finition qui permet de débarrasser les hydrolysats d'amidon de tous leurs contaminants résiduels. Cette étape de finition, comme il sera exemplifié ci-après, est également mise en oeuvre après le traitement préalable 30 de microfiltration frontale ou d'ultrafiltration tangentielle, avec la même finalité. Dans la dernière étape de cette première variante du procédé conforme à l'invention, l'hydrolysat d'amidon obtenu est alors collecté, et son contenu en contaminants analysé. 15 L'invention porte également sur l'hydrolysat d'amidon susceptible d'être décontaminé par les procédés, cet hydrolysat d'amidon étant choisi dans le groupe constitué des hydrolysats enzymatiques ou acides d'amidon et des maltodextrines. L'invention est enfin relative à l'utilisation de cet 20 hydrolysat d'amidon pour la préparation des polymères de glucose destinés à la fabrication de solutions pour dialyse péritonéale. L'invention sera mieux comprise à l'aide des exemples qui suivent, lesquels se veulent illustratifs et non limitatifs. 25 Exemple 1 : Préparation de l'hydrolysat d'amidon conformément à l'enseignement du brevet EP 667.356 La matière première pour l'obtention des polymères de glucose selon l'invention est produite à partir d'amidon de maïs 30 cireux de la manière suivante : - nettoyage du maïs de manière à garder exclusivement les grains de maïs entier, - trompe du maïs ainsi nettoyé en présence d'acide lactique de manière à assouplir les grains, 35 - broyage humide, puis séparation des différents constituants, i.e. germe, enveloppe cellulosique, protéines et amidon, - nettoyage de l'amidon à contre courant avec de l'eau désinfectée de manière à purifier l'amidon aussi bien physicochimiquement que bactériologiquement, - centrifugation et séchage de l'amidon, - mise en suspension de l'amidon dans une eau désinfectée à une matière sèche finale de 40 % et à une Température de 45°C à 50°C, - acidification de la suspension d'amidon par addition d'HCl à un pH Tableau I. Hydrolysats Alicyclo Levures Endotoxines Peptido- Répartition d'amidon bacillus (Nombre + glycanes 5-glucanes acidocaldarius de 5-glucanes (ng/g) / (Nombre de germes (EU/g) Endotoxines germes sur 1 sur 1 (%) g) g) Méthodes de Test LAL Test Haute Test LAL mesures sensibilité modifié lot « A°--5250 0 Exemple 2 : Choix des qualités de charbon actif en fonction de la nature et de la quantité des contaminants R-glucanes et peptidoglycanes susceptibles d'être retrouvés dans les hydrolysats d'amidon des lots A-5250 et B-3063 et d'une maltodextrine commerciale C Comme indiqué ci-avant, les étapes de traitement au charbon actif sont surtout mises en oeuvre pour adsorber les débris cellulaires de type endotoxines, (3-glucanes et peptidoglycanes. Le choix de la qualité de charbon actif repose sur l'analyse des isothermes de Freundlich tracés pour chaque charbon actif directement sur l'hydrolysat d'amidon à décontaminer. Comme il va être démontré ci-dessous, le choix du charbon actif dépendra directement de la charge en contaminants (en nature et quantité) présents dans les hydrolysats d'amidon à traiter. Comme indiqué ci-avant, le mode opératoire de la détermination de l'isotherme d'adsorption de Freundlich consiste à mélanger l'hydrolysat d'amidon (à 10 % de matière sèche) avec chaque type de charbon actif (5 doses croissantes comprises entre 0,125 % à 2 % sur la matière sèche à traiter, Le. 0,125 % ; 0,25 0,5 1% et 2 %) à une température de 75°C pendant une heure à un pH de 4,5. On détermine ensuite l'efficacité relative des charbons actifs de type « méso » et « micro » en fonction de la nature des contaminants de chaque lot par la mesure de la quantité d'impuretés adsorbées par unité de masse de charbon activé en fonction de la concentration résiduelle (après une heure de réaction) des impuretés en solution.35 2.1 Détermination des isothermes de Freundlich des charbons actifs de type NORIT SX + et ENO-PC versus deux lots A-5250 Tous les lots A présentent un profil semblable : contaminés essentiellement par des peptidoglycanes (polysaccharides sous forme libre) et des [3 glucanes. Le tableau II suivant présente, pour 5 doses de charbon actif croissantes, les taux résiduels en R glucanes et peptidoglycanes résiduels des lots A-5250 n°1 et n°2 de l'exemple 1, après traitement avec les deux qualités de charbon actif. Tableau II. Lot n°1 Lot n°2 NORIT SX + ENO-PC Test Haute Test Haute Dose de Méthode de sensibilité Méthode de sensibilité charbon actif détection LAL peptidoglycanes détection LAL peptidoglycanes (EU/g) (ng/g) (EU/g) (ng/g) 0 9,6 2.462 19,2 2.576 0,125 1,2 555 0,3 416 0,25 0,3 127 0,3 156 0,5 0,3 10 Mais en comparant les deux équations, il apparaît que : - pour une dose « x » de peptidoglycanes par exemple de 2000 ng/g, l'efficacité relative de la qualité des charbons actifs NORIT/ENO-PC est de 86 % ; tandis que pour une dose « x » de peptidoglycanes par exemple de 15 10 ng/g, l'efficacité relative de la qualité des charbons actifs NORIT/ENO-PC est de 180 Il s'en déduit que la qualité ENO-PC « mésopore » est bien adaptée à l'adsorption de grandes quantités de contaminants de peptidoglycanes, et que la qualité NORIT SX + « micropore » est 20 bien adaptée à l'adsorption de petites quantités de peptidoglycanes résiduels. Ce résultat permet, pour le lot A-5250, de définir l'ordre de mise en oeuvre des charbons actifs dans les étapes de décontamination de ce lot particulier d'hydrolysat d'amidon : 25 une étape de traitement au charbon actif ENO-PC suivi d'une étape de traitement au charbon actif NORIT SX +. 2.2 Détermination des isothermes de Freundlich des charbons actifs de type NORIT SX + et ENO-PC versus deux lots B- 30 3063 Tous les lots B présentent un profil semblable : contaminé essentiellement par des peptidoglycanes et des endotoxines. Le tableau III suivant présente, pour 5 doses de charbon 35 actif croissantes, les taux résiduels en R glucanes et peptidoglycanes résiduels du lot B-3063 n°1 et n°2 de l'exemple 1, après traitement avec les deux qualités de charbon actif. Tableau III. Lot n°1 Lot n°2 NORIT SX + ENO-PC Test Haute Test Haute Dose de Méthode de sensibilité Méthode de sensibilité charbon actif détection LAL peptidoglycanes détection LAL peptidoglycanes (EU/g) (ng/g) (EU/g) (ng/g) 0 2,4 36.029 2,4 25.029 0,125 0,5 140 0,3 928 0,25 La courbe d'adsorption du ENO-PC est quant à elle traduite par l'équation : Y = 6543 . x°'4849 avec un r2(coefficient de corrélation) de 0,9813. La linéarité de ces deux courbes prises séparément traduit bien l'efficacité d'adsorption des peptidoglycanes par ces deux qualités de charbon actif. Mais en comparant les deux équations, il apparaît que : - pour une dose « x » de peptidoglycanes par exemple de 2000 ng/g, l'efficacité relative de la qualité des charbons actifs NORIT/ENO-PC est de 279 % ; tandis que - pour une dose « x » de peptidoglycanes par exemple de 10 ng/g, l'efficacité relative de la qualité des charbons actifs NORIT/ENO-PC est de 417 Il s'en déduit que la qualité ENO-PC « mésopore » n'est pas adaptée à l'adsorption des peptidoglycanes de ce lot B-3063, et que la qualité NORIT SX + « micropore » peut être utilisée30 ici pour l'adsorption de petites et grandes quantités de peptidoglycanes. Ce résultat permet, pour le lot B-3063, de définir l'ordre de mise en oeuvre des charbons actifs dans les étapes de décontamination de ce lot particulier d'hydrolysat d'amidon : ici deux étapes de charbon actif de type NORIT SX + en série. 2.3 Détermination des isothermes de Freundlich des charbons actifs de type NORIT SX + et ENO-PC versus deux lots C Le tableau IV suivant présente, pour 5 doses de charbon actif croissantes, les taux résiduels en R glucanes/endotoxines et peptidoglycanes résiduels des lots C n°1 et n°2 de l'exemple 1, après traitement avec les deux qualités de charbon actif. Tableau IV Lot n°1 Lot n°2 ENO-PC NORIT SX + Test Haute Test Haute Dose de Méthode de sensibilité Méthode de sensibilité charbon actif détection LAL peptidoglycanes détection LAL peptidoglycanes (EU/g) (ng/g) (EU/g) (ng/g) 0 9,6 13.660 9,6 9.374 0,125 1,2 775 1,2 896 0,25 Il est important de noter que ces préparations enzymatiques ne sont pas exemptes de contaminants. Il est ainsi déterminé que : - le lysozyme FUKA présente un niveau d'endotoxines > 9,6 EU/ml et un niveau de petidoglycanes de 31000 ng/g - la CYTOHELICASE® de SIGMA présente quant à elle un niveau d'endotoxines > 9,6 EU/ml et un niveau de petidoglycanes de 38000 ng/g. Tableau V. Endotoxines Peptidoglycanes + (ng/g) 5-glucanes (EU/g) Méthodes de mesures Test LAL Test de haute sensibilité& peptidoglycanes lot « A-5250 » n°3 9,6 1.882 1) lysozyme (dose de 0,1 9,6 1.694 20 h d'incubation 2) Traitement UF 30 kDa 9,6 639 Facteur de Concentration Volumique = 10 perméat 3) Traitement au charbon actif Le tableau VII suivant présente la mesure des contaminants 10 R-glucanes/endotoxines et peptidoglycanes résiduels après traitements des lots C. 35 Tableau VII Endotoxines Peptidoglycanes + (ng/g) 5-glucanes (EU/g) Méthodes de mesures Test LAL Test de haute sensibilité& peptidoglycanes lot « C » n°3 9,6 10.556 1) lysozyme (dose de 0,1 9,6 17.968 20 h d'incubation 2) Traitement UF 30 kDa Facteur de Concentration Volumique = 10 perméat 9,6 534 3) Traitement au charbon actif NORIT SX + à 0,5 % Sur le perméat d'ultrafiltration Comme il va être démontré, dans certains cas de figure, le 5 traitement par ultrafiltration seule peut permettre l'abattement des endotoxines, R-glucanes et peptidoglycanes tout à fait satisfaisant. La conduite du procédé est la même que celle décrite dans l'exemple 3, mais sans utilisation d'enzymes (donc sans 10 modification du pH et de la température). 4.1 Traitement sur un lot A-5250 Le tableau VIII présente la teneur en contaminants 15 résiduels R-glucanes et peptidoglycanes après chaque étape, pour le lot A-5250 n°4. Tableau VIII. Endotoxines Peptidoglycanes + (ng/g) 5-glucanes (EU/g) Méthodes de mesures Test LAL Test de haute sensibilité& peptidoglycanes Lot « A-5250 » n°4 4,8 3.166 1) Traitement UF 30 kDa 4,8 883 Facteur de Concentration Volumique = 10 perméat 2) Traitement au charbon actif Si l'on compare aux valeurs du procédé du Tableau V (hors valeurs obtenues par le traitement au lysozyme) on note 25 cependant que l'abattement en R-glucanes et peptidoglycanes est meilleur si le traitement à la CYTOHELICASE® est réalisé avant l'étape d'ultrafiltration, même si, après le traitement de finition au charbon actif NORIT SX +, les résultats sont identiques. Ce traitement préalable à la CYTOHELICASE® est donc à préconiser pour optimiser l'efficacité du traitement de décontamination (capabilité du procédé de décontamination conforme à l'invention, i.e. son aptitude à produire de manière précise et répétable des hydrolysats d'amidon débarrassés de ses contaminants). 4.2 Traitement sur un lot B-3063 Le tableau IX présente la teneur en contaminants résiduels endotoxines et peptidoglycanes après chaque étape, pour le lot 15 B-3063 n°4. Tableau IX. Endotoxines Peptidoglycanes + (ng/g) 5-glucanes (EU/g) Méthodes de mesures Test LAL Test de haute sensibilité& peptidoglycanes Lot « B-3063 » n°4 1,2 10.241 1) Traitement UF 30 kDa Facteur de Concentration 1,2 4.3 Traitement sur un lot C Le tableau X présente la teneur en contaminants résiduels endotoxines et peptidoglycanes après chaque étape, pour le lot C n°4. 10 Tableau X. Endotoxines Peptidoglycanes + (ng/g) 5-glucanes (EU/g) Méthodes de mesures Test LAL Test de haute sensibilité& peptidoglycanes Lot C n°4 4,8 9.353 1) Traitement UF 30 kDa 38,4 340 Facteur de Concentration Les lots « A-5250 » n°6 ; « B-3063 » n°6 et « C » n°6 débarrassés de leurs germes contaminants de la manière telle qu'exposée dans l'exemple 3 sont soumis aux traitements suivants. 5.1. Deux traitements en série avec un charbon actif de même qualité. Il s'agit d'appliquer un double traitement avec le même charbon actif, en l'occurrence ici du NORIT SX + à 0,25 % sur sec caractéristique d'un traitement de type « micropore ». Le tableau XI suivant présente les résultats obtenus. En témoin, un traitement unique au charbon actif avec double dose de NORIT SX + est également réalisé. Tableau XI Endotoxines Peptidoglycanes + Hydrolysat d'amidon 5-glucanes (ng/g) (EU/g) départ 9,6 3.540 lot « A-5250 » ler TN 2,4 593 n°6 2eme TN Premier traitement : Noir chimique : ENO-PC de NORIT à 5 0,25 % de type « mésopore » ; Deuxième traitement de finition : NORIT SX + à 0,25 % de type « micropore ». Le tableau XII suivant présente les résultats obtenus. En témoin, un traitement unique au charbon actif avec mélange des 10 deux qualités de charbon actif a également été réalisé (référencé TN « mix »). Tableau XII Endotoxines Peptidoglycanes + Hydrolysat d'amidon 5-glucanes (ng/g) (EU/g) départ 9,6 3.540 lot « A-5250 » ler TN 0, 6 299 2ème TN Pour les lots 3063 et C, comme il avait été trouvé dans l'exemple 2 : un double traitement avec la qualité « micropore » NORIT SX + est le plus efficace.5 REVENDICATIONS1. Procédé de décontamination des hydrolysats d'amidon à partir desquels seront préparés des polymères de glucose 5 destinés à la fabrication de solutions pour dialyse péritonéale. 2. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes : 1) préparer un hydrolysat d'amidon, 10 2) filtrer ledit hydrolysat d'amidon de manière à éliminer tout contaminant présentant 1a taille d'un microorganisme de type levures, moisissures ou bactéries, 3) traiter ledit hydrolysat d'amidon ainsi débarrassé des microorganismes contaminants par des enzymes de dégradation des 15 constituants polysaccharidiques des parois cellulaires, choisies dans le groupe constitué de la laminarinase et du lysozyme, 4) ultrafiltrer l'hydrolysat d'amidon ainsi traité enzymatiquement, 5) traiter l'hydrolysat d'amidon ainsi obtenu sur charbon 20 actif à haute capacité d'adsorption, 6) collecter l'hydrolysat d'amidon ainsi décontaminé. 3. Procédé selon la revendication 2, caractérisé en ce que l'hydrolysat d'amidon de l'étape 1) est préparé par hydrolyse 25 enzymatique ou chimique d'amidon de manière à atteindre un équivalent Dextrose (DE) inférieur à 20. 4. Procédé selon la revendication 2, caractérisé en ce que l'hydrolysat d'amidon de l'étape 1) est préparé par hydrolyse 30 par voie acide d'un lait d'amidon cireuxjusqu'à un D.E. compris entre 8 et 15 et éventuellement par hydrolyse enzymatique à l'aide d'une alpha-amylase bactérienne jusqu'à un D.E. compris entre 11 et 18. 35 5. Procédé selon l'une quelconque des revendications 2 à 4, caractérisé en ce que l'étape 2) d'élimination à partir de l'hydrolysat d'amidon de tout contaminant présentant la taille d'un microorganisme de type levures, moisissures ou bactériess'effectue à l'aide d'une technique choisie dans le groupe constitué de la microfiltration et de l'ultrafiltration. 6. Procédé selon la revendication 5, caractérisé en ce que l'étape de microfiltration consiste en une filtration membranaires d'un diamètre de pore 0,22 }gym, précédé de manière optionnelle d'une filtration membranaire d'un diamètre de pore de 0,45 }gym. 7. Procédé selon la revendication 5, caractérisé en ce que l'étape d'ultrafiltration consiste en une ultrafiltration membranaire d'un seuil de coupure de 300.000 Da. 8. Procédé selon l'une quelconque des revendications 2 à 7, caractérisé en ce que le traitement d'hydrolyse enzymatique est effectué à la concentration d'enzymes à 0.001 à 1 % en poids d'hydrolysats d'amidon, de préférence compris entre 0,1 % à 0,5 9. Procédé selon l'une quelconque des revendications 2 à 8, caractérisé en ce que l'étape 4) d'ultrafiltration consiste en une ultrafiltration membranaire d'un seuil de coupure de 20.000 Da à 50.000 Da, de préférence de 30.000 Da. 10. Procédé selon l'une quelconque des revendications 2 à 9, caractérisé en ce que l'étape 5) de traitement au charbon actif à haute capacité d'adsorption consiste en une qualité de charbon actif de type « micropore ». 11. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes : 1) préparer un hydrolysat d'amidon, 2) filtrer ledit hydrolysat d'amidon de manière à éliminer tout contaminant présentant la taille d'un microorganisme de type levures, moisissures ou bactéries, 3) traiter ledit hydrolyser d'amidon de manière à éliminer tout contaminant présentant la taille minimale de 50 Angstrôms à l'aide d'une technique choisie dans le groupe constitué ducharbon actif, de la microfiltration frontale ou de l'ultrafiltration tangentielle, 4) traiter l'hydrolysat d'amidon ainsi obtenu sur charbon actif à haute capacité d'adsorption 5) collecter l'hydrolysat d'amidon ainsi décontaminé. 12. Procédé selon la revendications 11, caractérisé en ce que l'hydrolysat d'amidon de l'étape 1) est préparé par hydrolyse enzymatique ou chimique d'amidon de manière à atteindre un équivalent Dextrose (DE) inférieur à 20. 13. Procédé selon la revendication 11, caractérisé en ce que l'hydrolysat d'amidon de l'étape 1) est préparé par hydrolyse par voie acide d'un lait d'amidon waxy (ou cireux) jusqu'à un D.E. compris entre 8 et 15 et éventuellement par hydrolyse enzymatique à l'aide d'une alpha-amylase bactérienne jusqu'à un D.E. compris entre 11 et 18. 14. Procédé selon la revendication 11, caractérisé en ce que l'étape 2) d'élimination de tout contaminant présentant la taille d'un microorganisme de type levures, moisissures ou bactéries s'effectue à l'aide d'une technique choisie dans le groupe constitué de la microfiltration et de l'ultrafiltration. 15. Procédé selon la revendication 14, caractérisé en ce que l'étape de microfiltration consiste en une filtration membranaires d'un diamètre de pore 0,22 pm, précédé de manière optionnelle d'une filtration membranaire d'un diamètre de pore de 0,45 pm. 16. Procédé selon la revendication 14, caractérisé en ce que l'étape d'ultrafiltration consiste en une ultrafiltration membranaire d'un seuil de coupure de 300.000 Da. 17. Procédé selon l'une quelconque des revendications 11 à 16, caractérisé en ce que l'étape 3) de traitement au charbon actif est choisie dans le groupe constitué par le charbon actif de type « mésopore » et le charbon actif de type « micropore ».charbon actif, de la microfiltration frontale ou de l'ultrafiltration tangentielle, 4) traiter l'hydrolysat d'amidon ainsi obtenu sur charbon actif à haute capacité d'adsorption 5) collecter l'hydrolysat d'amidon ainsi décontaminé. 12. Procédé selon la revendications 11, caractérisé en ce que l'hydrolysat d'amidon de l'étape 1) est préparé par hydrolyse enzymatique ou chimique d'amidon de manière à 10 atteindre un équivalent Dextrose (DE) inférieur à 20. 13. Procédé selon la revendication 11, caractérisé en ce que l'hydrolysat d'amidon de l'étape 1) est préparé par hydrolyse par voie acide d'un lait d'amidon cireuxjusqu'à un 15 D.E. compris entre 8 et 15 et éventuellement par hydrolyse enzymatique à l'aide d'une alpha-amylase bactérienne jusqu'à un D.E. compris entre 11 et 18. 14. Procédé selon la revendication 11, caractérisé en ce 20 que l'étape 2) d'élimination de tout contaminant présentant la taille d'un microorganisme de type levures, moisissures ou bactéries s'effectue à l'aide d'une technique choisie dans le groupe constitué de 1a microfiltration et de l'ultrafiltration. 25 15. Procédé selon la revendication 14, caractérisé en ce que l'étape de microfiltration consiste en une filtration membranaires d'un diamètre de pore 0,22 pm, précédé de manière optionnelle d'une filtration membranaire d'un diamètre de pore de 0,45 pm. 30 16. Procédé selon la revendication 14, caractérisé en ce que l'étape d'ultrafiltration consiste en une ultrafiltration membranaire d'un seuil de coupure de 300.000 Da. 35 17. Procédé selon l'une quelconque des revendications 11 à 16, caractérisé en ce que l'étape 3) de traitement au charbon actif est choisie dans le groupe constitué par le charbon actif de type « mésopore » et le charbon actif de type « micropore ».