Brevet FR2968554A1 — publié le 20120615

La voie de signalisation Hedgehog (Hh) joue un rôle important dans la croissance et la structuration au cours du développement embryonnaire. La voie de signalisation Hh chez les mammifères met en jeu de nombreux effecteurs dont au moins - les protéines de la famille Hh codées par trois gènes distincts Shh (Sonic Hedgehog (Shh), Indian Hedgehog (Ihh) et Desert Hedgehog (Dhh), - les protéines responsables de la sécrétion et du transport des protéines Hh, dont Dispatched (Disp), - Shifted, qui agit à longue distance et est requise pour l'accumulation des protéines Hh, - les protéines réceptrices du signal Hh : Patched (Ptc), Hedgehog interacting protein (Hip) ; - Smoothened (Smo) responsable de la transmission du signal Hh à l'intérieur de la cellule réceptrice. Il est généralement admis dans l'art antérieur que Smo est constitutivement inhibée par Ptc en l'absence de protéines Hh et que la liaison du ligand Hh sur son récepteur Ptc engendre l'activation de Smo qui à son tour va activer les facteurs de transcription à doigts de zinc les facteurs Gli. II est bien décrit que les troubles de la voie de signalisation Hh induisent chez l'homme des malformations congénitales et des troubles tels que le syndrome de Gorlin et l'holoprosencéphalie. De même il est connu que les individus porteurs d'un allèle défectueux du gène PTCH1, conduisant à une réduction d'activité de la protéine correspondante, présentent un ensemble de défauts morphologiques, notamment au niveau des doigts, du faciès, des dents, des côtes, englobés sous le nom de syndrome de Gorlin. La protéine Patched est une protéine membranaire qui traverse 12 fois la membrane et interagit avec la protéine Hh au niveau des deux larges boucles extracellulaires. Les homologies de sa séquence avec celles des transporteurs bactériens de la famille RND (résistance, nodulation, division) suggèrent que cette protéine pourrait avoir une fonction de transporteur. Cependant à la connaissance de la demanderesse, le rôle de transporteur de la protéine Patched n'a jamais été démontré, particulièrement celui de transporteur d'agents anticancéreux. De manière surprenante et après de long travaux, et en utilisant comme prototype d'agents anticancéreux intracellulaires, la doxorubicine, la Demanderesse a 5 10 15 20 25 30 35 pu montrer par plusieurs approches sur différents modèles cellulaires (voir les exemples) que la protéine Patched est capable de fixer les agents anticancéreux intracellulaires, particulièrement la doxorubicine, et que la protéine Patched pourrait être responsable de l'efflux d'agents anticancéreux intracellulaires, particulièrement de la doxorubicine. Par efflux d'agents anticancéreux intracellulaires et/ou de doxorubicine, on entend ici que sous l'influence de la protéine Patched les agents anticancéreux intracellulaires et/ou la doxorubicine peuvent être transportés à l'extérieur de la cellule. En l'absence de la protéine Hh, la protéine membranaire Patched est présente au niveau de la membrane plasmique des cellules, la concentration intracellulaire en agents anticancéreux, particulièrement en doxorubicine, diminue avec l'augmentation de l'efflux des agents anticancéreux, particulièrement de la doxorubicine, induit par Patched. A l'inverse, quand la protéine Hh est sécrétée dans le milieu extracellulaire, elle interagit avec Patched, le complexe Patched/Hh est alors internalisé et dégradé. La disparition de la protéine Patched au niveau de la membrane plasmique a pour conséquence l'arrêt de l'efflux des agents anticancéreux, particulièrement de la doxorubicine et donc l'augmentation de la concentration intracellulaire en agents anticancéreux, particulièrement en doxorubicine. Ainsi les différents résultats obtenus par la demanderesse conduisent à proposer que la protéine Patched serait un transporteur transmembranaire et serait impliquée dans l'efflux des agents anticancéreux, particulièrement de la doxorubicine. Ainsi une régulation de l'activité de la protéine Patched permettrait de réguler la concentration intracellulaire en agents anticancéreux, particulièrement en doxorubicine. La découverte de cette nouvelle activité de la protéine Patched permet d'envisager de nouvelles voies d'amélioration de l'efficacité des traitements anticancéreux par la régulation de la concentration intracellulaire en agents anticancéreux, particulièrement de la doxorubicine. Ainsi l'invention a pour objet premier une méthode in vitro de régulation de la concentration intracellulaire en agents anticancéreux intracellulaires caractérisée en ce que l'on met en contact des cellules et un modulateur de l'activité de la protéine Patched pour réguler la concentration intracellulaire en agents anticancéreux. L'Homme du Métier sait pertinemment que lors des traitements à l'aide d'agents anticancéreux, particulièrement ceux à visée intracellulaire, les différents protocoles conduisent à utiliser soit un seul agent anticancéreux soit des combinaisons de plusieurs agents anticancéreux. Aussi dans le présent texte l'emploi de l'expression "agents anticancéreux " sous entend aussi bien un que plusieurs agents anticancéreux intracellulaires Par modulateur on entend ici aussi bien un activateur qu'un inhibiteur. Ainsi selon une variante de l'invention la méthode est une méthode in vitro d'augmentation de la concentration intracellulaire en agent anticancéreux, caractérisée en ce que l'on met en contact des cellules et un inhibiteur de l'activité de transport des agents anticancéreux par la protéine Patched. Et selon une autre variante de l'invention la méthode est une méthode in vitro de diminution de la concentration intracellulaire en agents anticancéreux, caractérisée en ce que l'on met en contact des cellules et un stimulateur de l'activité de transport des agents anticancéreux par la protéine Patched. Des applications thérapeutiques sont également envisageables. Ainsi l'invention a aussi pour objet l'utilisation d'un modulateur de l'activité de la protéine Patched pour la préparation d'un médicament destiné à réguler la concentration intracellulaire en agents anticancéreux. Selon une variante, l'invention a pour objet l'utilisation d'un activateur de l'activité de la protéine Patched pour la préparation d'un médicament destiné à diminuer la concentration intracellulaire en agents anticancéreux. Et selon une autre variante, l'invention a pour objet l'utilisation d'un inhibiteur de l'activité de la protéine Patched pour la préparation d'un médicament destiné à augmenter la concentration intracellulaire en agents anticancéreux. Par agents anticancéreux on entend selon l'invention les Antibiotiques antitumoraux, les Agents alkylants, les Antimétabolites, les Alcaloïdes végétaux, Inhibiteurs de la topoisomérase ou encore les Poisons du fuseau mitotique. A titre d'Antibiotiques antitumoraux on citera par exemple la Bléomycine, la Daunorubicine, la Doxorubicine, l'Épirubicine, l'Hydroxyurée, l'Idarubicine, la Mitomycine C ou encore la Mitoxantrone ; A titre d'Agents alkylants on citera par exemple le Busulfan, le Carboplatine, le Chlorambucil, le Cisplatine, la Cyclophosphamide, l'lfosfamide, le Melphalan, la Méchloréthamine , l'Oxaliplatine, l'Uramustine ou encore la Témozolomide ; A titre d'Antimétabolites on citera par exemple l'Azathioprine, le Capécitabine, la Cytarabine, la Floxuridine, la Fludarabine, le Fluorouracil, la Gemcitabine, le Méthotrexate ou encore le Pémétrexed ; A titre d'Alcaloïdes végétaux on citera par exemple la Vinblastine, ou encore la 35 Vincristine (Vinorelbine) ; A titre d'Inhibiteurs de la topoisomérase on citera par exemple l'lrinotécan, le Topotécan ou encore l'Étoposide ; Et enfin à titre de Poisons du fuseau mitotique on citera par exemple le Docétaxel, le Paclitaxel, la Vinblastine, la Vincristine ou encore la Vinorelbine. Avantageusement, selon l'invention l'agent (ou les agents) anticancéreux intracellulaire(s) particulièrement visé(s) peut (peuvent) appartenir à la famille des Antibiotiques antitumoraux et encore plus avantageusement l'agent anticancéreux intracellulaire particulièrement visé est la doxorubicine. Selon l'invention le modulateur (activateur ou inhibiteur) de l'activité de la protéine 10 Patched est avantageusement présent dans le médicament à des doses physiologiquement efficaces. Selon l'invention ledit médicament peut être formulé pour la voie digestive ou parentérale. Les médicaments selon l'invention peuvent comprendre en outre au moins un 15 autre ingrédient thérapeutiquement actif, qu'il soit actif sur la même pathologie ou sur une pathologie différente, pour une utilisation simultanée, séparée ou étalée dans le temps, notamment lors d'un traitement chez un sujet atteint de l'une des pathologies précédemment citées. Selon l'invention, le modulateur (activateur ou inhibiteur) de l'activité de la 20 protéine Patched peut être utilisé dans le médicament, en mélange avec un ou plusieurs excipients ou véhicules inertes, c'est à dire pharmaceutiquement inactifs et non toxiques. On peut citer par exemple des solutions salines, physiologiques, isotoniques, tamponnées, etc., compatibles avec un usage pharmaceutique et connues de l'homme 25 du métier. Les compositions peuvent contenir un ou plusieurs agents ou véhicules choisis parmi les dispersants, solubilisants, stabilisants, conservateurs, etc. Des agents ou véhicules utilisables dans des formulations (liquides et/ou injectables et/ou solides) sont notamment la méthylcellulose, l'hydroxyméthylcellulose, la carboxyméthylcellulose, les cyclodextrines, le polysorbate 80, le mannitol, la 30 gélatine, le lactose, des huiles végétales ou animales, l'acacia, etc. De façon préférentielle, on utilise des huiles végétales. Les compositions peuvent être formulées sous forme de suspension injectable, de gels, huiles, comprimés, suppositoires, poudres, gélules, capsules, etc., éventuellement au moyen de formes galéniques ou de dispositifs assurant une libération prolongée et/ou retardée. Pour ce type de 35 formulation, on utilise avantageusement un agent tel que la cellulose, des carbonates ou des amidons. L'administration peut être réalisée par toute méthode connue de l'homme du métier, de préférence par voie orale ou par injection, typiquement par voie intrapéritonéale, intra-cérébrale, intra-thécale, intra-veineuse, intra-artérielle ou intramusculaire. L'administration par voie orale est préférée. L'invention est utilisable chez les mammifères, notamment chez l'être humain. En général la dose journalière du composé sera la dose minimale pour obtenir l'effet thérapeutique souhaité. Si nécessaire, la dose journalière peut être administrée en deux, trois, quatre, cinq, six ou plus, prises par jour ou par sous-doses multiples administrées par intervalles appropriés pendant la journée. La quantité choisie dépendra de multiples facteurs, en particulier de la voie d'administration, de la durée d'administration, du moment de l'administration, de la vitesse d'élimination du modulateur (activateur ou inhibiteur) de l'activité de la protéine Patched, du ou des différents produits utilisés en combinaison avec le modulateur (activateur ou inhibiteur) de l'activité de la protéine Patched, de l'âge, du poids et de la condition physique du patient, ainsi que de son histoire médicale, et de toutes autres informations connues en médecine. L'invention a encore pour objet l'utilisation d'un modulateur de l'activité de la protéine Patched dans un traitement anticancéreux, avantageusement pour l'amélioration de l'efficacité d'un traitement anticancéreux. D'autres caractéristiques et avantages de l'invention apparaîtront à la lecture des exemples de réalisation de l'invention qui suivent ainsi qu'à l'observation des figures parmi lesquelles La figure 1 représente l'effet de la doxorubicine sur la résistance des levures exprimant la protéine Patched humaine (D) ou non (K699) (-) 1A : dans des cultures en l'absence de doxorubicine ; 1B : dans des cultures en présence de 10 pg/mL de doxorubicine. La figure 2 représente les résultats de l'étude de l'efflux de doxorubicine dans des levures exprimant (Ptc) ou n'exprimant pas (K699) la protéine Patched. Les valeurs de fluorescence sont données en unités arbitraires. La figure 3 représente les résultats des expériences conduites afin de déterminer si la protéine Patched endogène des fibroblastes de souris NIH3T3 favorise ou non l'efflux de doxorubicine. Les valeurs de fluorescence sont données en unités arbitraires. (D) Témoin sans Shh (-) avec Shh La figure 4 représente les résultats des expériences conduites sur des ovocytes de xénope et montrant l'influence de la protéine Patched sur l'efflux de doxorubicine. 4A : Western Blot sur des préparations de membranes d'ovocytes injectés avec 10 15 20 25 30 35 différentes quantités d'Acide Ribonucléique codant la protéine Patched humaine (ARN la protéine Patched humaine). 4B : Mesure de l'efflux de doxorubicine dans les ovocytes de xénope injectés avec différentes quantités d'ARN de la protéine Patched humaine. Les valeurs de 5 fluorescence sont données en unités arbitraires. La figure 5 représente les résultats de l'étude de la fixation de la doxorubicine à la protéine Patched présente dans des levures exprimant ou n'exprimant pas la protéine Patched. Exemples Matériels et méthodes Culture cellulaire et préparation de membranes La lignée cellulaire de fibroblastes de souris NIH 3T3 a été maintenue dans un milieu de culture DMEM (Invitrogen, USA) complété avec 10% de sérum de veau foetal, 100 U / ml de pénicilline et 100 tag / mL de streptomycine à 37°C en atmosphère à 5% CO2 saturée en eau. Les cellules ont été cultivées en monocouche à confluence 90-100% et soumises à pas plus de 20 passages cellulaires avec repiquage tous les 4/5 jours. Culture de levures et la préparation des membranes La souche K699 de S. cerevisiae (Mata, ura3, et leu 2-3) a été transformée avec le plasmide YEpPMAhPtc-MAP (Joubert et col.. 2009, BBA Biomembrane, 1788: 1813-1821; 2010, Methods in Molecular Biology, Humana Press, Mus-Veteau (Ed.), 601: 87-103) par la procédure de l'acétate de lithium et étalées dans des boites de culture contenant un milieu minimal et un mélange d'acides aminés sans leucine. Les clones ont été pré-cultivés à 30°C jusqu'à une densité optique à 600 nm (DO600) de 3 sur un milieu minimum (MM) (0,67% de base azotée de levure sans acides aminés, 0,3 mM adénine, 0,5 mM uracile, 0,3 mM tyrosine et d'un mélange d'acides aminés dépourvu de leucine) additionné de 2% de D-glucose. Cette préculture est ensuite diluée à une DO600 de 0,1-0,2 dans un milieu riche (extrait de levure, bactopeptone, adénine) à 2% de D-glucose et cultivée à 18°C sous agitation à 200 tr / min jusqu'à une DO600 de 5-7. Pour la préparation des membranes, toutes les mesures ont été effectuées à 4°C. Les levures ont été lavées à l'eau froide, remises en suspension dans 50 mM Tris-HCI (pH 7,4), 150 mM NaCl, 2,5 mM EDTA, 1 mM PMSF et 4 mM benzamidine, et brisées deux fois par agitation au vortex pendant 15 min en présence de perles de verre (425 à 600 pm, Sigma). 10 15 20 25 30 35 Les levures non cassées et les perles de verre ont été éliminées par centrifugation pendant 5 min à 2000 g. Les membranes ont été collectées par centrifugation du surnageant obtenu pendant 1 h à 100 000 g. Le culot a été lavé deux fois dans le même tampon sans EDTA et remis en suspension à 5 mg / ml dans un tampon contenant 50 mM Tris-HCI (pH 7,4), 150 mM NaCl, 10% de glycérol, 1 mM PMSF et 4 mM benzamidine. Electrophorèse sur gel et western blot Les protéines contenues dans les échantillons ont été séparées par électrophorèse sur gel SDS/polyacrylamide 8% (8% SDS-PAGE) et transférées sur membrane de nitrocellulose (Amersham) en utilisant des techniques standards. Les membranes de nitrocellulose ont d'abord été bloquées 1 heure à température ambiante dans un tampon de blocage (20 mM Tris-HCI (pH 7.5), 450 mM NaCl, 0,1% Tween-20, 4% de lait écrémé), puis mises en contact pendant la nuit à 4°C avec des anticorps polyclonaux de lapin anti-PTC (dilution 1:1000) (Joubert et col. 2009). Les membranes de nitrocellulose ont ensuite été lavées deux fois dans le tampon de blocage. Des anticorps secondaires polyclonaux de chèvre anti-lapin (dilution 1:3000) couplés à la peroxydase de raifort (Dako) ont ensuite été appliqués pendant 2 h à 4°C. La révélation des réactions a été réalisée en utilisant le kit ECL (Millipore), et un système de détection de chimioluminescence pour le Western blot Fusion FX7® (Vilber-Lourmat). Résistance des levures à la doxorubicine Des levures n'exprimant pas la protéine Patched humaine (contrôles) K699 et des levures exprimant la protéine Patched humaine ont été cultivées à 18°C en milieu riche normal et en milieu riche additionné de 10pg de doxorubicine par mL de milieu. La DO à 600 nm des levures est mesurée au cours du temps. Mesure de l'efflux de doxorubicine - sur cellules NIH3T3 : pour les expériences d'efflux de doxorubicine, des cellules NIH 3T3 ont été ensemencées sur dans les puits de plaques 24 puits en milieu de culture DMEM (Invitrogen, USA) complété avec 10% de sérum de veau foetal, 100 U / ml de pénicilline et 100 pg / mL de streptomycine à 37°C en atmosphère à 5% CO2 saturée en eau. A 80% de confluence, le milieu est éliminé et remplacé par du milieu contenant 10pM de doxorubicine. Les cellules sont alors incubées pendant 2h à 37°C sous agitation à 50 tr / min. Les cellules sont alors rincées avec du tampon NaCI (140 10 15 20 25 30 35 mM NaCl, 5 mM KCI, 1 mM CaCl2, 1 mM MgSO4, 5 mM glucose, 20 mM HEPES, pH 7,4) puis incubées avec 250 pL de tampon NaCl (140 mM NaCl, 5 mM KCI, 1 mM CaCl2, 1 mM MgSO4, 5 mM glucose, 20 mM HEPES, pH 7,4) en l'absence ou en présence de 30 nM de Shh. pendant, 30, 60 et 90 minutes. Après une centrifugation (5mn à 6800g) pour éliminer tout fragment de cellule, la lecture de la fluorescence de la doxorubicine (xex=490 +1- 10 nm, X,em=610 +1- 10 nm) été réalisée sur 200 pL de surnageant dans un lecteur de plaque (FLUOstar, Labtech). - sur levures : des levures contrôles K699 et des levures exprimant la protéine Patched humaine ont été cultivées à 18°C jusqu'à une DO600 de 7 sur un milieu riche additionné de 2 % de D-glucose. Les cellules sont alors centrifugées, (5mn, 3000g), lavées 4 fois à l'eau et finalement remises en suspension avec soin à une DO600 de 10 dans du tampon 50 mM NaOH-Hepes (pH 7,0) et incubées 2 heures avec 10 pM de doxorubicine. Après rinçage, les levures sont ressuspendues dans du tampon 50 mM NaOHHepes (pH 7,0). Au bout de 20 min, les levures sont centrifugées et la doxorubicine contenue dans le surnageant est mesurée par fluorescence (Xex=490 +1- 10 nm, X,em=610 +/- 10 nm). - sur ovocytes de xénopes : Obtention et préparation des ovocytes Les ovocytes sont prélevés par chirurgie sur une femelle Xenopus laevis anesthésiée avec 0,2% de MS222 (tricaine methanesulfonate) en accord avec les procédures recommandées par le comité d'éthique. Les ovocytes sont lavés avec une solution saline MBS pH 7.4 (NaCl 85 mM, KCI 1 mM, NaHCO3 2,4 mM, MgSO4 0,82 mM, Ca(NO3)2 0,33 mM, CaCl2 0,41 mM, HEPES 10 mM, NaOH 4,5 mM) supplémentée de 50 U/ml de pénicilline et 50 dag/ml de streptomycine. Les ovocytes sont ensuite défolliculés par incubation 16 h à 19°C avec 1,8 mg/mi de collagénase puis 30 min avec du MBS sans calcium, et placés en MBS. 50 nL contenant 10 ou 20 ng d'ARN codant la protéine Patched humaine sont injectés par ovocytes. Les ovocytes sont incubés 3 jours à 19°C dans du MBS. 4 lots de 10 ovocytes témoins (non injectés) et injectés avec des ARN codant la protéine Patched humaine ont été incubés 16h à 19°C avec 100NM de doxorubicine. Après rinçage, les ovocytes sont placés dans du MBS. Le surnageant est prélevé au bout de 90 min et la fluorescence de la doxorubicine présente dans l'échantillon est mesurée par fluorescence (xex=490 +1- 10 nm, ) em=610 +1- 10 nm). 10 15 20 25 30 35 Fixation de la doxorubicine à la protéine Patched La fixation de la doxorubicine à la protéine Patched est montrée par quenching de fluorescence de la doxorubicine sur des préparations membranaires de levures contrôles K699 et de levures exprimant la protéine Patched humaine. 50 nM de doxorubicine sont ajoutés à 30 pg de membranes et la fluorescence de la doxorubicine est mesurée en fonction du temps. Exemple 1 : Les levures exprimant la protéine la protéine Patched humaine résistent mieux à la doxorubicine que les levures ne l'exprimant pas (Figure 1). En milieu riche normal (1A) les levures contrôles K699 (^) et les levures exprimant la protéine Patched humaine (-) présentent une croissance dans le temps similaire. En présence de doxorubicine (1B) les levures exprimant la protéine Patched humaine résistent mieux que les levures contrôles. Exemple 2 : La protéine Patched humaine exprimée dans la levure favorise l'efflux de doxorubicine (Figure 2) On observe que la présence de la protéine Patched humaine à la membrane des levures provoque une augmentation de l'efflux de doxorubicine. Exemple 3 : La Protéine Patched endogène favorise l'efflux de doxorubicine dans des fibroblastes de souris (Figure 3) Afin de vérifier si la protéine Patched possède la même fonction dans le système endogène, des fibroblastes de souris NIH3T3 ont été cultivées dans des plaques 24 puits à confluence, puis incubées en présence de doxorubicine. On observe que la présence de Shh inhibe de 20 à 30 % l'efflux de doxorubicine. Shh interagit avec la protéine Patched à la surface des cellules et provoque son internalisation. La diminution de l'efflux de doxorubicine observée en présence de Shh pourrait donc être due à la disparition de la protéine Patched de la surface de la cellule. Exemple 4 : La protéine Patched humaine exprimée dans des ovocytes de xénope favorise l'efflux de doxorubicine (Figure 4) La figure 4A présente un Western blot réalisé sur des préparations de membranes d'ovocytes injectés avec 10 (piste 1) ou 20 (piste 2) ng d'ARN codant la protéine Patched humaine par ovocyte. La piste 3 correspond au témoin constitué d'ovocytes non injectés. On observe que la protéine Patched humaine est exprimée à la membrane plasmique des ovocytes et que cette expression est proportionnelle à la quantité d'ARN injectée. 10 15 La figure 4B présente les mesures d'efflux de doxorubicine sur les ovocytes. Les expériences étant réalisées sur 4 lots de 10 ovocytes témoins (non injectés) et injectés avec des ARN codant la protéine Patched humaine, la moyenne des valeurs obtenues pour les 4 lots est présentée. On observe que la présence de la protéine Patched humaine à la membrane plasmique des ovocytes provoque une augmentation de l'efflux de doxorubicine de la cellule. Exemple 5 Fixation de la doxorubicine à la protéine Patched humaine exprimée dans des levures. (Figure 5) - : Levures contrôles n'exprimant pas la protéine Patched humaine. ^ : Levures exprimant la protéine Patched humaine (préparation 1) x : Levures exprimant la protéine Patched humaine (préparation 2) : Levures exprimant la protéine Patched humaine (préparation 3) On observe un quenching de la fluorescence de la doxorubicine rapide et important avec les membranes contenant la protéine Patched humaine correspondant à la fixation de la doxorubicine à la protéine Patched humaine. REVENDICATIONS1.) Méthode in vitro de régulation de la concentration intracellulaire en agents anticancéreux caractérisée en ce que l'on met en contact des cellules et un modulateur de l'activité de la protéine Patched pour réguler la concentration intracellulaire en agents anticancéreux . 2_) Méthode selon la revendication 1, caractérisée en ce que l'on met en contact des cellules et un stimulateur de l'activité de transport des agents anticancéreux par la protéine Patched. 3.) Méthode selon la revendication 1, caractérisée en ce que l'on met en contact des cellules et un inhibiteur de l'activité de transport des agents anticancéreux par la protéine Patched. 4.) Utilisation d'un modulateur de l'activité de la protéine Patched pour la préparation d'un médicament destiné à réguler la concentration intracellulaire en agents anticancéreux. 5.) Utilisation selon la revendication 4, caractérisé en ce que le modulateur de l'activité de la protéine Patched est un activateur de l'activité de la protéine Patched et que le médicament est destiné à diminuer la concentration intracellulaire en agents anticancéreux. 6.) Utilisation selon la revendication 4, caractérisé en ce que le modulateur de l'activité de la protéine Patched est un inhibiteur de l'activité de la protéine Patched pour la préparation d'un médicament destiné à augmenter la concentration intracellulaire en agents anticancéreux. 7.) Méthode selon l'une quelconque des revendications 1 à 3 ou utilisation selon l'une quelconque des revendications 4 à 6, caractérisé en ce que l'agent anticancéreux est choisi parmi les Antibiotiques antitumoraux, les Agents alkylants, les Antimétabolites, les Alcaloïdes végétaux, Inhibiteurs de la topoisomerase ou encore les Poisons du fuseau mitotique. 8.) Méthode ou utilisation selon la revendication 7, caractérisé en ce que l'agent anticancéreux est un antibiotique antitumoral. 9.) Méthode ou utilisation selon la revendication 8, caractérisé en ce que l'antibiotique antitumoral est choisi parmi la Bléomycine, la Daunorubicine, la Doxorubicine, l'Épirubicine, l'Hydroxyurée, l'ldarubicine, la Mitomycine C ou encore la Mitoxantrone, préférentiellement, la doxorubicine. 10.) Utilisation d'un modulateur de l'activité de la protéine Patched dans la préparation d'un médicament anticancéreux, avantageusement d'un médicament destiné à améliorer l'efficacité d'un traitement anticancéreux.