Brevet FR2976076A1 — publié le 20121207

PROCEDE DE DETECTION ET DE QUANTIFICATION D'UNE MOLECULE CIBLE DANS UN TISSU Domaine de l'invention L'invention concerne un procédé de préparation d'une gamme de dilution d'une molécule pour un tissu. Plus particulièrement, le procédé selon l'invention permet de réaliser une gamme de dilution d'une molécule d'intérêt pour un tissu d'intérêt, qui tient compte du comportement de ladite molécule dans ledit tissu. L'invention concerne également un procédé de détection et de quantification d'au moins une molécule cible dans un tissu, par exemple par spectrométrie de masse. Plus particulièrement, l'invention fournit un procédé permettant la détection et la quantification d'une molécule cible directement à la surface d'un tissu, en utilisant l'imagerie par spectrométrie de masse, et notamment l'imagerie MALDI. D'une manière générale, l'invention trouve des applications dans tout domaine où la détection et/ou la quantification d'une molécule dans un tissu est utile/nécessaire. L'invention trouve par exemple des applications dans le domaine pharmaceutique pour étudier la distribution et la pharmacocinétique d'un médicament dans différents tissus biologiques. De même, l'invention trouve des applications dans le domaine biomédical, par exemple pour détecter, identifier et tracer un biomarqueur donné, dans un tissu pathologique à un instant donné. L'invention trouve également des applications dans le domaine de l'agrochimie, par exemple pour évaluer la toxicité et la dégradation d'une molécule telle qu'un produit phytosanitaire dans des plantes. Etat de la technique Différentes techniques sont actuellement utilisées pour détecter et identifier une molécule dans un échantillon, notamment un tissu. Par exemple, la spectrométrie de masse est une technique largement connue et utilisée en analyse chimique et biochimique, pour détecter et identifier des molécules d'intérêt dans un échantillon. Depuis quelques années, l'imagerie moléculaire par spectrométrie de masse, telle que l'imagerie MALDI, s'est développée, permettant de visualiser la distribution de molécules d'intérêt directement sur des coupes de tissus biologiques. L'imagerie MALDI, de par sa très grande sensibilité, permet de visualiser simultanément la distribution d'un très grand nombre de molécules différentes directement à la surface des tissus. Dans le domaine pharmaceutique, cette technologie permet par exemple de comparer la distribution d'une molécule dans différents organes à différents temps de traitement. Cependant, dans le cas où une quantification de la molécule ainsi détectée à l'instant t est souhaitée, il est nécessaire de coupler cette technique d'imagerie à une analyse chimique quantitative, par une méthode classique ou instrumentale. Cette seconde étape de quantification est source d'erreurs de manipulation et d'interprétation. De plus, elle ne permet pas une corrélation directe entre la présence de la molécule d'intérêt et sa distribution quantitative dans le tissu. Par ailleurs, une molécule donnée à une concentration donnée n'émet pas un signal de même intensité selon le tissu dans lequel elle est détectée. De même, deux molécules différentes à une concentration identique dans un tissu donné présentent une intensité de signal différente. Ce phénomène peut s'expliquer par l'existence d'un coefficient d'extinction tissulaire (TEC), ou effet tissu, propre à chaque molécule et chaque tissu. Le TEC est représentatif de la perte ou du gain d'intensité du signal d'une molécule donnée suivant le tissu et/ou sa localisation dans le tissu, par rapport au signal de ladite molécule sur un support d'analyse, inerte. Le TEC est dépendant de plusieurs facteurs, et notamment de la nature du tissu (animal ou végétal), de l'environnement chimique, du traitement chimique ou non du tissu etc. L'existence de ce TEC rend difficile l'interprétation de l'intensité du signal émis par une molécule dans un tissu lors d'une analyse, notamment en spectrométrie de masse. Exposé de l'invention L'invention propose un procédé permettant de préparer une gamme de dilution, ou gamme étalon, d'une molécule donnée pour un tissu donné. La gamme étalon selon l'invention est préparée en utilisant une coupe d'une reconstitution du tissu d'intérêt à partir d'un tissu fragmenté. Les inventeurs ont découvert qu'une molécule donnée se comporte de façon équivalente dans un tel tissu reconstitué et dans le tissu intègre correspondant. Dans le cas d'une analyse par spectrométrie de masse, le spectre de masse de la molécule dans le tissu reconstitué est sensiblement identique au spectre de masse de la même molécule, à la même concentration, dans le tissu intègre correspondant. De même, dans le cas d'une analyse par fluorescence, l'intensité du signal fluorescent émis par la molécule marquée dans le tissu reconstitué est sensiblement identique à l'intensité du signal fluorescent émis par la même molécule marquée, à la même concentration, dans le tissu intègre correspondant. Aussi, en utilisant une gamme étalon selon l'invention pour une analyse quantitative d'une molécule donnée dans un tissu donné, il n'est pas nécessaire de tenir compte du TEC. Le signal obtenu lors de l'analyse de ladite molécule dans ledit tissu peut directement être corrélés aux signaux de la gamme étalon correspondante. L'invention propose également un procédé pour détecter et quantifier une molécule cible dans un tissu, quel que soit le mode de détection et notamment par ionisation, radioactivité ou fluorescence. Par exemple, le procédé selon l'invention utilise la spectrométrie de masse, ou l'imagerie par spectrométrie de masse, permettant une acquisition automatisée d'un signal lié au spectre de masse de la molécule, directement sur une coupe du tissu, afin de reconstruire des images de la distribution et de la quantité de ladite molécule cible dans le tissu. Pour cela, selon l'invention, on utilise une gamme de dilution de la molécule cible, ou d'une molécule présentant des caractéristiques physico-chimiques similaires, réalisée en utilisant une coupe d'un tissu reconstitué du tissu à analyser. Une quantification précise de la molécule dans le tissu est alors possible par comparaison directe avec les résultats de la gamme de dilution. L'invention propose également un procédé de validation d'un procédé de détection et/ou quantification d'une molécule cible dans un tissu en utilisant une coupe de tissu. Le procédé de validation selon l'invention permet de vérifier pour un tissu donné et une molécule donnée, que les résultats d'analyse obtenus pour ladite molécule directement sur une coupe dudit tissu seront représentatifs dudit tissu, indépendamment de l'effet tissu. L'invention a donc pour objet un procédé de préparation d'une gamme de dilution d'au moins une molécule étalon pour un tissu, comprenant les étapes 30 consistant à : (i) broyer un tissu pour obtenir un broyat de tissu ; (ii) mélanger la molécule étalon à un premier échantillon du broyat de tissu de l'étape (i), ladite molécule étalon étant à une première concentration connue ; (iii) conditionner le premier échantillon de broyat de tissu issu de l'étape (ii) 35 de manière à pouvoir couper ledit échantillon de broyat de tissu conditionné ; (iv) répéter les étapes (ii) et (iii) avec au moins un second échantillon du broyat de tissu de l'étape (i) et une seconde concentration connue de la molécule étalon, différente de la première concentration ; (v) analyser au moins une coupe de chacun des échantillons de broyat de tissu conditionné issu de l'étape (iii), de manière à obtenir un signal représentatif de la quantité de molécule étalon dans le tissu pour chacune des concentrations de ladite molécule étalon. Le procédé selon l'invention peut s'appliquer à tout tissu biologique, qu'il soit d'origine animale ou végétale. Par tissu, on entend d'une manière générale un ensemble de cellules de même origine et regroupées en un ensemble fonctionnel pour concourir à une même fonction. Dans certains cas, un tissu peut s'entendre d'un organe ou d'une partie d'organe. La molécule étalon peut être un peptide, un polypeptide, une protéine, un acide aminé, un acide nucléique, un lipide, un métabolite, une petite molécule telle qu'une drogue etc. Plus généralement, la molécule étalon peut être toute molécule active sur le plan pharmaceutique, biologique ou autre. Selon l'analyse devant être réalisée à l'étape (v), la molécule étalon peut être non marquée ou marquée, et notamment radiomarquée ou marquée avec une molécule fluorescente, telle que la GFP (« Green Fluorescente Protéine »). Lors de l'étape (i) de broyage, le tissu peut être fragmenté de manière à former un broyat plus ou moins fin, notamment liquide, semi-liquide, pâteux etc. Le broyat de tissu peut ne pas être homogène et par exemple comporter des fragments de tissu de différentes tailles. Le broyage peut être effectué par tout moyen, notamment manuel ou mécanique. Par exemple, le broyat de tissu est obtenu par cisaillement à l'aide d'un mixeur, ou par écrasement à l'aide d'un pilon. Selon l'invention, le tissu utilisé à l'étape (i) est avantageusement un organe, tel qu'un rein, un foie etc. On utilise alors indifféremment un organe entier ou une portion seulement dudit organe pour réaliser la gamme étalon. Le tissu peut être broyé avant d'être subdivisé en au moins autant d'échantillons de broyat de tissu qu'il y a de points de dilution dans la gamme étalon à réaliser. Il est autrement possible de procéder à la division dudit tissu avant le broyage, chaque échantillon étant individuellement broyé. Il est également possible d'utiliser un ou plusieurs organes différents, entiers ou non, pour chacun des points de dilution de la gamme étalon, les organes utilisés pour la réalisation d'une même gamme étant à chaque fois de nature et d'origine identiques. Par exemple, pour la réalisation d'une gamme étalon d'une molécule dans un foie de rat, comprenant quatre points de dilution, ou concentrations, on utilise pour chaque concentration un nouveau foie de rat. Des préparations de la molécule étalon à au moins deux concentrations différentes sont réalisées. Par exemple, la molécule étalon est mise en suspension dans une solution de solubilisation (aqueuse ou contenant un solvant), à différentes concentrations connues. Une même quantité de solution est alors ajoutée à chacun des échantillons de broyat de tissu, chacune ayant une concentration différente et connue en ladite molécule étalon. Dans un autre exemple, la molécule étalon est mise en suspension dans une solution de solubilisation, des quantités différentes de ladite solution étant ajoutées à chacun des échantillons de broyat de tissu, de manière à ce que chaque échantillon de broyat de tissu issu de l'étape (ii) présente une concentration différente et connue en ladite molécule étalon. Préférentiellement, la gamme de dilution comporte entre 2 et 10 points de dilution. Avantageusement, on prévoit avant l'étape (iii) de conditionnement une étape d'homogénéisation, afin d'obtenir une répartition homogène de la molécule étalon dans l'échantillon de broyat de tissu. Cette étape d'homogénéisation peut par exemple se faire à l'aide d'un mélangeur tel qu'un Vortex. Dans un exemple de réalisation, les étapes (i), (ii) et le cas échéant l'étape d'homogénéisation se font successivement ; il est bien entendu possible de conduire tout ou partie de ces étapes simultanément. Par exemple, on broie le tissu avec la solution contenant la molécule étalon. 30 L'étape (iii) de conditionnement consiste en un traitement et/ou une mise en forme de l'échantillon de broyat de tissu, pour permettre sa découpe afin d'obtenir au moins une coupe dudit broyat. Par exemple, le conditionnement comporte une étape de congélation de 35 l'échantillon de broyat de tissu. Pour cela, l'échantillon de broyat de tissu est par25 exemple disposé dans un moule, dont la forme peut être quelconque, l'ensemble étant ensuite congelé par toute technique appropriée. Par exemple, ledit moule est plongé dans l'azote liquide, afin de provoquer une congélation instantanée de l'ensemble de la masse, puis maintenu à -18°C jusqu'à l'étape de découpe. Dans un autre exemple, l'étape de conditionnement consiste en un enrobage dudit échantillon de broyat de tissu, notamment dans de la paraffine, de la résine ou de la gélatine. Par enrobage, on entend un revêtement qui entoure entièrement l'échantillon de broyat de tissu. L'étape d'enrobage peut notamment se faire en utilisant un moule. Bien entendu, l'étape de congélation peut être suivie d'une étape d'enrobage. Le choix du conditionnement peut notamment dépendre de l'état de l'échantillon de broyat de tissu. Par exemple, si le broyat de tissu issu de l'étape (ii) est liquide, on choisira avantageusement de congeler l'échantillon de broyat de tissu pour permettre la découpe ultérieure. Dans le cas où le broyat consiste en un hachis grossier du tissu, ou en une pâte compacte, un enrobage dans de la paraffine ou autre peut suffire à permettre sa découpe. Dans un mode de réalisation, il est possible d'utiliser un même moule pour conditionner tout ou partie des échantillons de broyat de tissu d'une même gamme étalon. Dans ce cas, le moule comporte différents casiers, pour permettre une séparation physique entre les différents échantillons. Avantageusement, les cloisons délimitant les casiers sont amovibles et/ou dans un matériau susceptible d'être découpé aux mêmes conditions que les échantillons de broyat de tissu. Ainsi, il est possible de réaliser des coupes à partir du contenu du moule, qui comportent chacune la succession d'échantillons de broyat de tissu de la gamme de dilution en cours de réalisation. Préférentiellement, les échantillons de broyat de tissu sont disposés par concentrations croissantes (ou décroissantes) successives dans les casiers successifs. Une fois conditionnés, les échantillons de broyat de tissu peuvent être indifféremment maintenus dans les conditions du conditionnement, par exemple congelés, ou être conservés dans des conditions garantissant le maintien de leur intégrité (par exemple à une température de +5°C environ), dans leurs moules ou démoulés, jusqu'à leur découpe et/ou leur utilisation dans l'étape (v) d'analyse. Avantageusement, l'échantillon de broyat de tissu issu de l'étape (iii) présente 35 une masse volumique identique à celle d'un tissu correspondant intègre. De même, avantageusement, l'échantillon de broyat de tissu issu de l'étape (iii) présente un coefficient d'extinction tissulaire (TEC) identique à celui d'un tissu correspondant intègre. Par masse volumique, on entend la densité du tissu ou d'échantillon de broyat de tissu. Par tissu intègre, on entend un tissu identique au tissu utilisé pour réaliser les échantillons de broyat de tissu, qui conserve les qualités/propriétés inhérentes dudit tissu. L'étape (v) d'analyse est conduite sur des coupes des échantillons de broyat de tissu, préalablement réalisées à partir des échantillons de broyat conditionnés. Toute technologie permettant une analyse moléculaire sur une coupe de tissu peut être utilisée pour l'étape (v), comme la spectrométrie de masse, l'analyse par fluorescence, l'autoradiographie etc. D'une manière générale, une coupe s'entend d'une section d'un tissu (reconstitué ou intègre). Aussi, toutes les dimensions de coupes compatibles avec la l'analyse moléculaire et notamment quantitative, par exemple dans un spectromètre ou un microscope, peuvent être utilisées. Avantageusement, les coupes présentent une épaisseur comprise entre 2µm et 501um, et notamment environ 201um. L'épaisseur s'entend de la dimension s'étendant perpendiculairement au plan de la coupe. Selon des exemples de mise en oeuvre du procédé de l'invention, les coupes peuvent être traitées avant l'étape d'analyse. Par exemple, il est possible de procéder à une dessiccation de la coupe obtenue à partir d'un échantillon de broyat de tissu préalablement congelé ou enrobé. Dans le cas d'une coupe issue d'un échantillon de broyat de tissu préalablement congelé, il est possible de procéder à un cryodesséchage de ladite coupe. Par exemple, la coupe est placée à -18°C pendant une nuit avant l'étape d'analyse. Les coupes de tissu peuvent être réalisées à partir d'échantillons de broyat de tissu encore congelés, ou sur lesdits échantillons une fois décongelés. Avantageusement, pour la réalisation d'une gamme de dilution donnée, les mêmes conditionnements et traitement(s) ultérieur(s) éventuel(s) sont appliqués à tous les échantillons de broyat de tissu. Préférentiellement, toutes les coupes utilisées pour la réalisation d'une gamme étalon donnée sont d'épaisseur sensiblement identique.35 Avantageusement, les coupes d'échantillons de broyat de tissu sont déposées sur un support, tel qu'une lame, permettant leur introduction au sein d'un spectromètre, d'un microscope, ou autre. Préférentiellement, toutes les coupes utilisées pour la réalisation d'une gamme étalon donnée sont disposées sur des supports identiques pour la conduite de l'analyse. D'une manière générale, les mêmes conditions d'analyse sont avantageusement appliquées à tous les échantillons de broyat de tissu d'une même gamme de dilution. Par conditions d'analyse, on entend notamment les réglages et paramétrages de l'appareil utilisé pour l'analyse, et les conditions de préparation des échantillons, comme les étapes de lavage éventuelles, le dépôt d'une matrice dans le cas d'une analyse par spectrophotométrie, etc. Une fois le signal représentatif de la quantité de la molécule obtenu pour chacune des coupes d'échantillons de broyat de tissu de la gamme, il est possible de réaliser une courbe de calibration représentative de la gamme de dilution. Par exemple, dans le cas d'une analyse par spectrométrie de masse, on choisit un même signal associé au spectre de masse de la molécule cible pour tous les points de dilution, pour tracer la courbe de calibration. Le signal peut notamment être l'intensité du pic, l'aire du pic ou le ratio signal/bruit dudit spectre de masse. Dans le cas d'une analyse par autoradiographie, on utilise l'intensité de la radioactivité émise par la molécule étalon radiomarquée, par exemple au carbone 14. Dans le cas d'une analyse par fluorescence, on utilise l'intensité de l'émission lumineuse de la molécule étalon marquée par une molécule fluorescente. Dans un mode de réalisation du procédé de l'invention, on réalise au moins deux gammes étalons différentes en même temps. Par exemple, au moins deux molécules étalons différentes sont ajoutées à l'étape (ii) dans chacun des échantillons du broyat de tissu, l'analyse de l'étape (v) étant conduite pour chacune des molécules étalons de manière à obtenir le signal représentatif de la quantité en la molécule étalon de chacune des molécules étalons dans le tissu, pour chacune des concentrations. Chaque molécule étalon est ajoutée dans un échantillon de broyat de tissu donné à une concentration donnée, qui peut être différente de la concentration en l'autre molécule dans ledit échantillon de broyat de tissu.35 La gamme de dilution selon l'invention peut être utilisée pour calculer la plus petite quantité de molécule étalon détectable dans le tissu avec un niveau de confiance donné, ou LOD (« Limit of détection »). Pour cela, on identifie sur la gamme de dilution le plus petit signal détectable dans la limite de détection, c'est-à- dire présentant une valeur signal/bruit supérieure ou égale à 3. De même, la gamme étalon peut être utilisée pour calculer la plus petite quantité de molécule étalon quantifiable dans le tissu avec un niveau de confiance donné, ou LOQ (« Limit of quantification »). Cette valeur (signal/bruit) est fixée au niveau international comme devant être égale à trois fois la valeur le LOD (LOQ=3LOD) et être au moins égale à 10. Les gammes de dilution obtenues selon le procédé de l'invention peuvent également être utilisées pour quantifier une molécule cible dans un tissu lors d'une analyse dudit tissu. Ainsi, l'invention a également pour objet un procédé de détection et de quantification d'au moins une molécule cible dans au moins un échantillon tissulaire comprenant les étapes suivantes : a) analyser une coupe de l'échantillon tissulaire, de manière à obtenir un signal représentatif de la quantité de molécule cible dans ladite coupe ; b) déterminer la quantité de molécule cible dans l'échantillon tissulaire en utilisant une gamme de dilution d'une molécule étalon pour ledit échantillon tissulaire obtenue par le procédé selon l'invention. L'échantillon tissulaire s'entend d'au moins une partie d'au moins un tissu biologique (d'origine végétale ou animale). L'échantillon tissulaire peut comporter plusieurs tissus adjacents dans un organisme. Par exemple, la coupe de l'échantillon tissulaire peut consister en une coupe d'un animal entier ou d'une portion d'un animal, comportant au moins un organe ou au moins une portion d'organe. Notamment l'analyse sur une coupe d'un animal entier peut permettre de comparer, sur un même échantillon, la distribution d'une ou plusieurs molécules cibles dans différents tissus dudit animal. Dans ce cas, pour déterminer la quantité d'une molécule cible donnée dans chacun des tissus de l'échantillon tissulaire, on utilise à chaque fois une gamme de dilution de ladite molécule cible spécifique du tissu considéré. L'étape a) d'analyse de la molécule cible peut se faire par toute méthode d'analyse, comme la spectrométrie de masse, et notamment en utilisant la spectrométrie de masse directe (MS) ou en tandem (MS', MRM, SRM), l'analyse par fluorescence, l'autoradiographie etc. Le procédé selon l'invention peut être avantageusement utilisé avec la spectrométrie de masse. Dans ce cas, il est possible d'utiliser différentes sources d'ionisation, MALDI (Désorption-Ionisation Laser Assistée par Matrice), LDI (Désorption-Ionisation Laser), LAESI (Laser Ablation Electrospray Ionization), DESI (Désorption-Ionisation par Electrospray), etc, combinée à différents types d'analyseurs, TOF (Temps de Vol), Orbitrap, FTICR (Résonance Cyclotronique des Ions à Transformée de Fourier), etc. Cette technique d'imagerie permet de quantifier la molécule cible directement sur la carte de densité ionique obtenue pour l'échantillon tissulaire, correspondant à la répartition spatiale de la molécule cible dans ledit échantillon tissulaire. On peut en effet reporter le signal obtenu sur ladite carte de densité ionique sur la gamme de dilution correspondante. Certaines techniques de spectrométrie de masse, telles que MALDI ou MESIMS, nécessitent de recouvrir préalablement une coupe de l'échantillon tissulaire à analyser d'une matrice comportant de petites molécules organiques absorbant dans l'UV. Cette matrice permet la désorption et l'ionisation des molécules présentes sur l'échantillon. Le procédé selon l'invention peut être utilisé quelle que soit la matrice choisie. Ces matrices se présentent sous forme solide (cristallisation sur l'échantillon) ou liquide et sont dites ioniques ou non. Le choix de la matrice s'effectue selon la gamme de masse analysée. Elles sont le plus souvent préparées extemporanément dans un mélange solvant-solution aqueuse. Plusieurs modes de dépôt de la matrice sont possibles, et notamment le dépôt manuel à l'aide d'une pipette, qui permet de déposer un volume précis de matrice directement sur le tissu. Il également possible de déposer la matrice par spray ou nébulisation, la matrice étant sprayée ou nébulisée directement sur l'échantillon tissulaire à l'aide d'un robot ou manuellement. De même, un dépôt par microgouttelettes par lequel la matrice est spottée sur l'échantillon tissulaire via des systèmes piézo-électriques, acoustique ou pousse-seringue peut être envisagé. Il est également possible de déposer la matrice par tamisage, afin de déposer la matrice sous forme solide. Les paramètres expérimentaux, comme la gamme de masse et/ou l'intensité laser, sont avantageusement fixés de manière à optimiser la détection de la molécule cible en termes d'intensité, de sensibilité et de résolution. On procède alors à l'acquisition du signal représentatif de la quantité de molécule cible dans ladite coupe. Dans le cas où l'analyse consiste en l'acquisition du spectre de masse, différentes caractéristiques spectrales peuvent être utilisées comme signal à l'étape b), et notamment l'intensité des pics du spectre de masse, le rapport signal sur bruit (S/N), l'aire du pic, etc. Bien entendu, la caractéristique spectrale utilisée pour quantifier la molécule cible est la même que la caractéristique spectrale utilisée pour la préparation de la gamme étalon. Et plus généralement, la caractéristique du signal prise en compte pour quantifier la molécule cible est la même que la caractéristique du signal utilisée pour la préparation de la gamme étalon. Dans certaines conditions, il est par ailleurs possible de normaliser la ou les caractéristiques spectrales à partir d'un facteur de normalisation déterminée par la technologie. Par exemple, dans le cas où le procédé selon l'invention utilise l'imagerie par spectrométrie de masse de type MALDI, on prévoit une étape d'évaluation de l'homogénéité du dépôt de matrice sur l'échantillon. En effet, le signal correspondant à la matrice utilisée peut renseigner quant à la qualité/uniformité du dépôt de ladite matrice. Les défauts de matrice à la surface de l'échantillon peuvent ensuite être corrélés à la non-détection ou à la perte d'intensité du signal de la molécule cible dans l'échantillon considéré. L'évaluation de l'homogénéité de la matrice peut se faire selon des critères qualitatifs, en observant au microscope optique l'homogénéité du dépôt à la surface de l'échantillon, et/ou selon des critères quantitatifs, en suivant les variations du signal relatif à la matrice elle-même sur l'échantillon. En ce qui concerne les critères qualitatifs, il faut s'assurer que la matrice a été déposée le plus uniformément possible sur la surface considérée, qu'il n'existe pas de zones vide de matrice et que sa cristallisation est optimale. Pour l'évaluation quantitative de l'homogénéité du dépôt de matrice, on 35 considère la matrice comme une molécule propre dont le signal est détecté au même titre que le signal de la molécule cible, au moment de l'analyse d'un échantillon. Le signal de la molécule de matrice est ensuite comparé à son signal de référence. Le signal de référence de la matrice correspond dans ce cas au signal émis par la matrice sur un dépôt de matrice de référence, c'est-à-dire sur un échantillon et sur un support d'analyse utilisés spécifiquement pour la mesure du signal de référence de la matrice. Par ces étapes additionnelles, on valide et normalise le signal de la molécule cible pour tenir compte de la variation de la qualité du dépôt de matrice pouvant jouer sur les caractéristiques spectrales de cette dernière. Cette prise en compte de l'effet matrice peut être particulièrement avantageuse dans le cas où on souhaite suivre l'évolution de la présence d'une molécule cible dans le temps, la qualité du dépôt de matrice pouvant varier d'un échantillon à l'autre. La gamme étalon utilisée peut être réalisée à l'aide d'une molécule étalon identique à la molécule cible. Il est également possible d'utiliser une molécule étalon différente de la molécule cible, et présentant des propriétés physico-chimiques similaires. Il est également possible d'utiliser la molécule cible marquée d'un isotope comme molécule étalon pour la préparation de la gamme de dilution. Selon les méthodes d'analyse utilisées, la molécule cible peut être marquée. Par exemple, dans le cas d'une analyse de fluorescence, la molécule cible est marquée par une molécule fluorescente. De même, dans le cas d'une analyse par autoradiographie, la molécule cible est radiomarquée. Le procédé selon l'invention peut être utilisé pour l'analyse de toutes sortes de molécules, comme par exemple des peptides, des polypeptides, des protéines, des acides aminés, des acides nucléiques, des lipides, des métabolites, etc., et, en général, pour toute molécule active sur le plan pharmaceutique ou autre, et notamment, dans le cas d'une analyse par spectrométrie de masse, pour toute molécule qui peut être ionisée. Dans le cas où la molécule cible est une protéine de poids moléculaire élevé, il est possible d'effectuer un prétraitement enzymatique de la molécule cible, afin de la cliver en plusieurs peptides. La détection et la quantification sont alors réalisées pour au moins un des peptides issus de ladite digestion enzymatique, représentatif de ladite protéine. Par exemple, on peut utiliser de la trypsine, afin de cliver la protéine cible en plusieurs peptides préalablement identifiés. De même, il est possible de traiter le tissu à analyser avec au moins un solvant et/ou au moins un détergent avant l'étape de détection, de manière à éliminer des molécules responsables de bruit de fond. Par exemple, un lavage au chloroforme permet de retirer certaines classes de lipides. Un lavage à l'éthanol permet quant à lui une meilleure détection des molécules de masses faibles. Ces deux lavages permettent avantageusement de retirer certaines molécules, notamment lipidiques, favorisant ainsi la détection de nouveaux ions directement sur l'échantillon tissulaire. Le procédé selon l'invention peut également être utilisé pour détecter et quantifier au moins deux molécules cibles différentes sur un même échantillon tissulaire, simultanément ou non. On utilise alors des gammes de dilutions différentes spécifiques chacune de la molécule cible considérée et du tissu considéré. De même, une même molécule cible peut être détectée et quantifiée simultanément sur différents tissus, en analysant par spectrométrie de masse, ou autre, un échantillon tissulaire comportant plusieurs tissus. Dans ce cas, on utilise pour chacun des tissus de l'échantillon, par exemple des organes dans une coupe d'animal entier, la gamme de dilution réalisée pour ladite molécule cible dans le tissu/organe correspondant. L'invention propose également un procédé de validation d'un procédé de détection et/ou de quantification d'au moins une molécule cible dans un tissu à partir d'une coupe dudit tissu, comprenant les étapes consistant à : (x) broyer un tissu identique au tissu auquel le procédé de détection et/ou de quantification doit être appliqué, pour obtenir un broyat de tissu ; (xi) mélanger une molécule étalon à au moins deux échantillons du broyat de tissu de l'étape (x), ladite molécule étalon étant à une même concentration connue 30 pour les au moins deux échantillons de broyat de tissu ; (xii) conditionner les échantillons de broyat de tissu issus de l'étape (xi) de manière à pouvoir couper lesdits échantillons de broyat de tissu conditionné ; (xiii) analyser au moins une coupe de chacun des échantillons de broyat de tissu conditionné de l'étape (xii), de manière à obtenir un signal représentatif de la 35 molécule étalon pour chacune des coupes ; (xiv) comparer entre eux les signaux obtenus pour chacune des coupes. Un tel procédé permet de vérifier, notamment en amont d'un procédé de détection et/ou de quantification, qu'un tissu reconstitué donné, c'est-à-dire un broyat de tissu conditionné, est représentatif du tissu correspondant intègre. Ce procédé permet d'évaluer la sensibilité du procédé de détection et/ou quantification selon l'invention pour une molécule donnée et un échantillon donné, notamment au moyen de la LOD. Avantageusement, l'étape (xi) est conduite sur trois échantillons de broyat de tissu. La comparaison des signaux réalisée à l'étape (xiv) permet avantageusement d'évaluer la reproductibilité de la détection et/ou de la quantification d'une molécule donnée dans un tissu donné, en calculant le coefficient de variation RSD (« relative standard deviation »), donné en décimal ou en pourcentage. Bien entendu, tous les modes de réalisation particuliers du broyat de tissu, de conditionnement, de préparation de la molécule étalon, d'analyse etc., de même que la nature du tissu et/ou de la molécule étalon, tels qu'exposés ci-dessus pour la préparation de la gamme de dilution peuvent s'appliquer pour la réalisation du procédé de validation. Brève description des figures Figures lA et lB. Une représentation schématique d'un exemple de moule (figure lA) à plusieurs compartiments, pouvant être utilisé lors de la mise en oeuvre du procédé de préparation d'une gamme de dilution selon l'invention, chaque compartiment pouvant recevoir un échantillon de broyat de tissu dopé avec une concentration spécifique de molécule étalon ; et une représentation schématique des échantillons de broyat de tissu conditionnés et démoulés après congélation dans le moule (figure lB), chaque échantillon de broyat de tissu étant séparé d'un échantillon adjacent par une cloison. Figure 2 : Une courbe de calibration d'une molécule étalon (propranolol) dans un tissu (rein) obtenue selon le procédé de préparation de l'invention, représentant la concentration (µg/g - axe des abscisses) en propranolol en fonction de l'intensité émise par le propranolol (axe des ordonnées) en spectrométrie de masse. EXEMPLES Matériel et méthode Matériel Du propranolol de Sigma-Aldrich a été utilisé pour réaliser une solution de 10 propranolol à 1.10-10 mol/µl. Six sous-volumes précis différents de cette solution sont prélevés, qui seront chacun ajoutés à un échantillon de broyat de tissu, de manière à obtenir une concentration dans les échantillons de 0, 2.8, 5.6, 11.2, 22.4 et 44.8µg/g (tableau 1). 15 Echantillons de broyat de tissu Des souris mâles de type Swiss de poids 25-40g de chez Charles River (France) ont été utilisées. Pour la préparation de la gamme de dilution, deux reins d'une souris contrôle (c'est-à-dire n'ayant subi aucun traitement particulier) sont prélevés. Les deux reins 20 sont broyés mécaniquement à l'aide d'un scalpel, dans un récipient préalablement stérilisé et déposé sur de la glace. Une fois le broyat de rein obtenu, on repartit de manière approximative ledit broyat dans six tubes de 1,5 ml, et chacun des six échantillons de broyat de tissu est pesé (tableau 1). On ajoute à chacun des échantillons de broyat de tissu un des sous-volumes 25 particulier de la solution de propranolol. Le tableau 1 ci-dessous reprend l'ensemble des données spécifiques des six échantillons de broyat de rein. Tableau 1 : Préparation des échantillons de broyat de rein utilisés pour la 30 réalisation d'une gamme de dilution représentative du propranolol dans le rein.5 Numéro Poids Volume de propranolol (µl) Concentration en d'échantillon d'une solution de propranolol à propranolol finale homogénat 10 de broyat de 1.10 moulai ajouté par dans l'échantillon rein (g) échantillon (µg/g) 1 0.7 61.7 2.8 2 0.4 66.4 5.6 3 0.7 246.8 11.2 4 0.4 265.8 22.4 0.4 637.8 44.8 6 0.5 0.0 0.0 Préparation des tissus reconstitués Chaque tube contenant un échantillon de broyat de rein est vortexé pendant 1 5 heure à température ambiante, de manière à répartir de manière homogène le propranolol dans lesdits échantillons. On utilise un moule 100 en aluminium, tel que celui représenté à la figure lA, munis de 7 cloisons 101 transversales de manière à ménager six compartiments 102 s'étendant successivement dans une plus grande dimension dudit moule (trois compartiments seulement sont ménagés dans le moule de la figure lA). Le moule est placé dans de l'azote liquide de manière à congeler rapidement les broyat de rein. Le moule est ensuite placé pendant 1 heure à -80°C. Le bloc 200 de tissus reconstitués, ou conditionnés, (c'est-à-dire les échantillons de broyat de rein congelés) est ensuite démoulé (figure lB). Les tissus reconstitués 201 sont coupés à l'aide d'un cryostat refroidi à -22°C sur une épaisseur de 201um. Selon les besoins, on maintient sur une même coupe tous les tissus 201 de la gamme séparés les uns des autres par les cloisons 101, ou on sépare la portion correspondant au(x) tissu(s) reconstitués souhaités, du reste de la coupe. EXEMPLE 1 : VALIDATION DU MODELE « TISSU RECONSTITUE » Dans cet exemple, on cherche à démontrer que des tissus reconstitués, formés par des broyat de tissus qui ont été congelés, forment un modèle représentatif du tissu intègre correspondant. Pour cela, on a mesuré et comparé la masse volumique et le coefficient d'extinction moléculaire (TEC) d'un rein reconstitué selon l'invention et d'un rein intègre. Dix coupes du tissu reconstitué N°6 (contrôle, tableau 1) sont individualisées et placées chacune sur un support (lame ITO2). On réalise également dix coupes de tissu de 201um à partir d'un rein intègre prélevé sur une autre souris témoin, maintenu à température ambiante. Chaque coupe est disposée sur un support (lame ITO3). Les supports sont scannés simultanément dans un scanneur HP Scanjet G4010 à 2400dpi et l'image est enregistrée au format jpeg. La masse volumique moyenne des coupes de rein reconstitué et des coupes de rein intègre est alors calculée, comme expliqué dans le tableau 2 ci-dessous. Plus précisément, la valeur moyenne de la surface, de la hauteur, du volume et du poids du rein reconstitué est calculée à partir des valeurs obtenues pour chacune des dix coupes du tissu reconstitué contrôle. De même, la valeur moyenne de la surface, de la hauteur, du volume et du poids du rein intègre est calculée à partir des valeurs obtenues pour chacune des dix coupes correspondantes. On constate que les masses volumiques des deux tissus sont sensiblement identiques, puisqu'elles ne différent que de 0,04 mg/mm3 (tableau 2). Afin de calculer le TEC pour le tissu reconstitué et pour le tissu intègre, de la matrice MALDI DHB (40mg/mL méthanol/TFA 0.1% 1/1) contenant l0pmol de propranolol est sprayée à l'aide d'un système robotisé (SunCollect) sur les deux lots de dix lames ITO2 et ITO3 utilisées pour le calcul de la masse volumique. Chaque coupe de tissu est ensuite analysée en imagerie MALDI à l'aide d'un Autoflex speed LRF (Bruker, Daltonics). Les intensités du propranolol (m/z 260.2) de chaque lot de coupes sont moyennées sur la coupe de tissu et sur le support. Le TEC peut alors être calculé en utilisant les valeurs de l'intensité du signal émis par le propranolol sur la lame et sur les tissus respectivement, selon la formule mathématique :35 In t(hume)x Comme cela est repris dans le tableau 2, on constate que les valeurs moyennes de TEC obtenues pour le rein reconstitué et pour le rein intègre sont identiques. Le rein reconstitué présente donc la même masse volumique et le même coefficient d'extinction tissulaire qu'un rein intègre. Tableau 2 : Comparaison des masses volumiques et des TEC dans un rein reconstitué et un rein intègre. Coupe rein reconstitué Coupe rein normal Pixels 121637 229374.2 Surface (mm2) 12.1637 22.93742 Hauteur (mm) 0.02 0.02 Volume (mm3) 0.243274 0.4587484 Poids (mg)/coupe 0.17 0.305 Masse volumique (mg/mm3) 0.7 0.66 TEC 1.9361 1.922125 Ecar type 0.162580886 0.408923827 % erreur TEC 8.4 21.3 Le propranolol se comporte donc de manière identique dans un rein reconstitué et dans un rein intègre. L'utilisation d'un tissu reconstitué pour la préparation d'une gamme de dilution d'une molécule selon l'invention peut donc permettre par la suite de quantifier de manière fiable ladite molécule dans un tissu intègre correspondant. EXEMPLE 2 : PREPARATION D'UNE GAMME DE DILUTION DE PROPRANOLOL POUR LE REIN On dépose une coupe comportant la succession d'échantillons de broyat de rein, et donc présentant les 6 concentrations successives de propanolol (dans l'ordre présenté dans le tableau 1), sur un support (lame ITO1). 18 TES` _ lnt(tis.su)x On spraye de la matrice MALDI DHB (40mg/mL méthanol/TFA 0.1% 1/1) sur la coupe de tissu à l'aide d'un système robotisé (SunCollect). Chaque portion de la coupe représentant un échantillon de broyat de rein est 5 ensuite analysée en imagerie par spectrométrie de masse à l'aide d'un Autoflex speed LRF (Bruker, Daltonics). On délimite ensuite sur l'image obtenue par spectrométrie de masse pour chacun des échantillons de broyat de tissu plusieurs régions d'intérêt (ROI), d'égales dimensions. 10 On choisie d'utiliser comme signal de référence l'intensité des pics du spectre de masse. On récupère les intensités des pics du spectre de masse du propranolol pour chaque ROI, pour chacun des échantillons de broyat de tissu. Et pour chaque échantillon de broyat de tissu, on calcule une intensité moyenne (ROI moyen) à partir de l'intensité obtenue pour tous les ROIS correspondants. 15 Les intensités moyennes des pics du spectre de masse du propranolol pour chaque point de la gamme de dilution, c'est-à-dire pour chaque échantillon de broyat de tissu, sont répertoriées dans le tableau 3. Tableau 3 : Intensités moyennes obtenues par imagerie MALDI pour chaque 20 point de la gamme de dilution de propranolol (m/z 260.2) dans un rein reconstitué Numéro Concentration finale en propranolol Intensité d'échantillon de broyat de rein dans le tissu reconstitué (µg/g) 1 2.8 9273.9 2 5.6 18223.0 3 11.2 37269.0 4 22.4 74191.0 44.8 145396.6 6 0.0 500.3 Une droite d'étalonnage peut alors être dessinée. Cette droite d'étalonnage peut être utilisée ultérieurement, lors d'un procédé de quantification du propranolol 25 dans un rein. Il suffit de corréler l'intensité du pic du spectre de masse obtenue pour le propranolol dans le rein analysé à une concentration sur ladite droite de calibration. Par exemple, on trace une droite de calibration représentant la concentration en propranolol dans le tissu (tg/g) en fonction de l'intensité du pic du spectre de masse (figure 2). L'équation de la courbe de tendance de l'ensemble des points de la gamme de dilution, ou nuage de points, est calculée sous le format y=ax+b à l'aide d'un logiciel de retraitement graphique, comme par exemple excel. Dans l'exemple décrit, l'équation de la courbe de tendance est y = 3244,7x + 534,92. Cette équation permet par la suite la quantification de la molécule. De même, on calcule le coefficient de détermination (ici R2=0.9999) qui est un indicateur qui permet de juger la qualité d'une régression linéaire, simple ou multiple. Plus ce coefficient est proche de 1, plus la courbe de tendance est linéaire. EXEMPLE 3 : QUANTIFICATION DU PROPRANOLOL DANS UN REIN DE 15 SOURIS TRAITEE Un rein de souris traitée à 7.5mg/kg de propranolol, et sacrifiée 20 minutes post-administration, est prélevé. Trois coupes de tissu de 20µm d'épaisseur sont réalisées à partir du rein et sont déposées chacune sur un support (lame ITO). 20 De la matrice MALDI DHB (40mg/mL méthanol/TFA 0.1% 1/1) est sprayée à l'aide d'un système robotisé (SunCollect) sur les coupes. Chaque coupe est analysée en imagerie par spectrométrie de masse, à l'aide d'un Autoflex speed LRF (Bruker, daltonics). L'intensité moyenne des pics du 25 spectre de masse du propranolol (m/z 260.2) est calculée, en utilisant là encore plusieurs ROIS sur chaque coupe, tous de dimensions identiques. La valeur de l'intensité moyenne obtenue est de 19633.3. La concentration en propranolol dans le rein est quantifiée à l'aide de 30 l'équation de la droite de calibration (figure 2), en reportant la valeur moyenne d'intensité obtenue sur ladite droite. Le propranolol est ici à une concentration de 5.9µg/g de tissu. REVENDICATIONS1- Procédé de préparation d'une gamme de dilution d'au moins une molécule étalon 5 pour un tissu, comprenant les étapes consistant à : (i) broyer un tissu pour obtenir un broyat de tissu ; (ii) mélanger la molécule étalon à un premier échantillon du broyat de tissu de l'étape (i), ladite molécule étalon étant à une première concentration connue ; (iii) conditionner le premier échantillon de broyat de tissu issu de l'étape (ii) de 10 manière à pouvoir couper ledit échantillon de broyat de tissu ; (iv) répéter les étapes (ii) et (iii) avec au moins un second échantillon du broyat de tissu de l'étape (i) et une seconde concentration connue de la molécule étalon, différente de la première concentration ; (v) analyser au moins une coupe de chacun des échantillons de broyat de tissu 15 conditionné issu de l'étape (iii), de manière à obtenir un signal représentatif de la quantité de molécule étalon dans le tissu pour chacune des concentrations de ladite molécule étalon. 2- Procédé de préparation d'une gamme de dilution selon la revendication 1, dans lequel l'étape (iii) de conditionnement de l'échantillon de broyat de tissu consiste en une 20 congélation et/ou en un enrobage dudit échantillon de broyat de tissu. 3- Procédé de préparation d'une gamme de dilution selon l'une des revendications 1 et 2, dans lequel l'étape (v) d'analyse consiste en une analyse par spectrométrie de masse, ou une analyse par fluorescence, ou une analyse par autoradiographie. 4- Procédé de préparation d'une gamme de dilution selon l'une des revendications 1 à 3, comprenant l'étape supplémentaire consistant à : (vi) homogénéiser l'échantillon de broyat de tissu et la molécule étalon de l'étape (ii) avant l'étape (iii) de conditionnement. 5- Procédé de préparation d'une gamme de dilution selon l'une des revendications 1 à 4, dans lequel la molécule étalon est une protéine, un peptide, un 25 30polypeptide, un acide aminé, un acide nucléique, un lipide, une drogue, une molécule active pharmaceutiquement ou biologiquement, ou un métabolite. 6- Procédé de préparation d'une gamme de dilution selon l'une des revendications 1 à 5, dans lequel l'échantillon de broyat de tissu issu de l'étape (iii) présente une masse volumique et/ou un coefficient d'extinction tissulaire identique à ceux du tissu correspondant intègre. 7- Procédé de préparation d'une gamme de dilution selon l'une des revendications 1 à 6, dans lequel au moins deux molécules étalons différentes sont ajoutées dans chacun des échantillons du broyat de tissu, l'analyse de l'étape (v) étant conduite pour chacune des molécules étalons de manière à obtenir le signal représentatif de la quantité de chacune des molécules étalons dans le tissu pour chacune des concentrations. 8- Procédé de détection et de quantification d'au moins une molécule cible dans au moins un échantillon tissulaire comprenant les étapes suivantes : a) analyser une coupe de l'échantillon tissulaire, de manière à obtenir un signal représentatif de la quantité de molécule cible dans ladite coupe ; b) déterminer la quantité de molécule cible dans l'échantillon tissulaire en utilisant une gamme de dilution d'une molécule étalon pour ledit échantillon tissulaire obtenue par le procédé selon l'une des revendications 1 à 7. 9- Procédé de détection et de quantification d'au moins une molécule cible dans au moins un échantillon tissulaire selon la revendication 8, dans lequel la molécule cible est une protéine, un peptide, un polypeptide, une acide aminé, un acide nucléique, un lipide, une drogue, une molécule active pharmaceutiquement ou biologiquement, ou un métabolite. 10- Procédé de détection et de quantification d'au moins une molécule cible dans au moins un échantillon tissulaire selon l'une des revendications 8 et 9, dans lequel l'échantillon tissulaire analysé est un tissu biologique d'origine animale ou végétale. 11- Procédé de détection et de quantification d'au moins une molécule cible dans au moins un échantillon tissulaire selon l'une quelconque des revendications 8 à 10, dans lequel l'étape (a) consiste en une analyse par spectrométrie de masse, le signal associé au spectre de masse de la molécule cible correspondant à l'intensité du pic, l'aire du pic ou le ratio signal/bruit dudit spectre de masse. 12- Procédé de détection et de quantification d'au moins une molécule cible dans au moins un échantillon tissulaire selon l'une quelconque des revendications 8 à 11, dans lequel la molécule étalon utilisée pour la préparation de la gamme étalon correspond à la molécule cible. 13- Procédé de détection et de quantification d'au moins une molécule cible dans au moins un échantillon tissulaire selon l'une quelconque des revendications 8 à 12, dans lequel on utilise l'imagerie par spectrométrie de masse, l'intensité du signal de la molécule cible permettant de visualiser simultanément la distribution et la concentration en la molécule cible dans la coupe dudit échantillon tissulaire. 14- Procédé de détection et de quantification d'au moins une cible molécule dans au moins un échantillon tissulaire selon l'une quelconque des revendications 8 à 13, dans lequel on détecte et quantifie simultanément au moins deux molécules cibles différentes dans ledit échantillon tissulaire. 15- Procédé de détection et de quantification d'au moins une molécule cible dans au moins un échantillon tissulaire selon l'une quelconque des revendications 8 à 14, caractérisé en ce qu'on détecte et quantifie la molécule cible directement sur une coupe d'un animal entier, de manière à comparer simultanément la distribution de ladite molécule cible dans différents tissus de l'animal. 16- Procédé de validation d'un procédé de détection et/ou de quantification 30 d'au moins une molécule cible dans un tissu à partir d'une coupe dudit tissu, comprenant les étapes consistant à : (x) broyer un tissu identique au tissu auquel le procédé de détection et/ou de quantification doit être appliqué, pour obtenir un broyat de tissu ;(xi) mélanger une molécule étalon à au moins deux échantillons du broyat de tissu de l'étape (x), ladite molécule étalon étant à une même concentration connue pour les au moins deux échantillons de broyat de tissu ; (xii) conditionner les échantillons de broyat de tissu issus de l'étape (xi) de 5 manière à pouvoir couper lesdits échantillons de broyat de tissu ; (xiii) analyser au moins une coupe de chacun des échantillons de broyat de tissu issu de l'étape (xii), de manière à obtenir un signal représentatif de la molécule étalon dans le tissu pour chacune des coupes ; (xiv) comparer les signaux obtenus pour chacune des coupes entre eux. 10