Brevet FR2948383A1 — publié le 20110128

Le domaine de l'invention est celui de l'analyse microbiologique par voie biochimique, et en particulier de la détection et de l'identification de microorganismes, tels que notamment de bactéries ou de levures. La résistance des bactéries aux antibiotiques est un problème majeur de santé publique. La résistance de microorganismes infectieux envers un traitement s'est développée en même temps que les molécules anti-infectieuses et représente aujourd'hui un obstacle majeur en thérapeutique. Cette résistance est source de problèmes multiples, incluant les difficultés de détection au laboratoire, les options de traitement limitées et un impact délétère sur l'issue clinique. En particulier, l'augmentation rapide et irrépressible de la résistance des bactéries pathogènes, au cours des 20 dernières années, représente un des problèmes actuels majeurs de la médecine. Les infections causées par ces organismes sont à l'origine de l'allongement de la durée d'hospitalisation et sont associées à des taux élevés de morbidité et de mortalité, suite à des échecs thérapeutiques. Plusieurs mécanismes de résistance peuvent être impliqués simultanément chez une souche bactérienne. Ils se classent en général en 3 catégories : défaut de pénétration de l'antibiotique dans la bactérie, inactivation ou excrétion de l'antibiotique par des systèmes enzymatiques bactériens et défaut d'affinité entre la cible bactérienne et l'antibiotique. L'inactivation enzymatique est le mécanisme le plus fréquent de résistance acquise en termes de nombre d'espèces et d'antibiotiques concernés. Ainsi, les céphalosporinases chromosomiques de classe C constituent aujourd'hui un des mécanismes de résistance prédominants des bactéries gram-négatif, les bactéries exprimant de telles enzymes étant résistantes aux céphalosporines. De même, les 13-lactamases sont des enzymes exprimées par certaines bactéries, capables d'hydrolyser la liaison C-N du noyau (3-lactame, structure de base des antibiotiques de la famille des 13-lactamines, pour donner un produit microbiologiquement inactif. Plusieurs inhibiteurs de (3-lactamases (IBL), tels que l'acide clavulanique (AC), le tazobactam et le sulbactam, ont été développés pour augmenter l'activité antimicrobienne et élargir le spectre des 13-lactamines qui leur sont associées. Agissant comme un substrat suicide des (3-lactamases, ils empêchent la dégradation enzymatique des antibiotiques et leur permettent de devenir efficace contre des bactéries initialement résistantes. Cependant, de par l'exposition persistante des souches à la pression antibiotique, les bactéries expriment leur capacité d'adaptation par la production continue et dynamique de 13-lactamases, évoluant en même temps que le développement de nouvelles molécules. Les bactéries Gram-négatif productrices de céphalosporinases chromosomiques de classe C de haut niveau (on parle de bactéries Case HN), ainsi que les bactéries Gram-négatif productrices de (3-lactamases à spectre étendu (on parle alors de bactéries BLSE) sont devenues de ce fait une menace grandissante, en particulier parce que le nombre d'espèces bactériennes concernées augmente. Les bactéries Case HN et BLSE sont résistantes à des traitements à base de pénicillines et céphalosporines de 1ère et 2ème générations, mais également de céphalosporines de 3ème génération (C3G) (cefotaxime CTX, ceftazidime CAZ, cefpodoxime CPD, ceftriaxone CRO) et des monobactams (aztreonam ATM). Par contre, les 7a-méthoxycéphalosporines (céphamycines: cefoxitine, cefotetan) et les carbapénèmes (imipénème, méropénème, ertapénème) conservent généralement leur activité. Les BLSE sont inhibées par les inhibiteurs de (3-lactamases (IBL), ce qui permet de les différencier des autres céphalosporinases. Ces bactéries expriment ainsi le plus souvent simultanément des résistances à plusieurs traitements, ce qui pose des difficultés pour installer un traitement pertinent et éviter les échecs thérapeutiques. Une bactérie Escherichia coli peut ainsi être Case HN et BLSE. En outre, comme les entérobactéries BLSE positives ont tendance à disséminer la résistance par transmission clonale de souches ou transfert plasmidique conjugatif, elles représentent un problème pour le contrôle des infections. Dans la plupart des études, Escherichia coli et Klebsiella pneumoniae demeurent les espèces productrices de BLSE les plus communes. Mais les BLSE ont, depuis quelques années, grandement élargi leur panel d'espèces hôtes. En effet, de nombreuses espèces d'entérobactéries et de bacilles gram-négatif non fermentants (comme Pseudomonas aeruginosa) ont également été rapportées comme producteurs de BLSE. Il devient donc indispensable, d'un point de vue de santé publique, de pouvoir identifier le plus rapidement possible de tels microorganismes, et de tels mécanismes de résistances. En général, la recherche des micro-organismes résistants à un traitement se fait selon les étapes suivantes 1. prélèvement d'un échantillon biologique susceptible de contenir lesdits micro-organismes 2. ensemencement et incubation d'un milieu de culture (18 à 48H) pour induire une croissance exponentielle des micro-organismes 3. Repérage sur les milieux de culture des colonies de micro-organismes potentiellement significatifs 4. Caractérisation de l'espèce de micro-organisme 5. Identification des mécanismes de résistance des micro-organismes analysés, leur signification biologique et éventuellement la thérapie adaptée. Cette succession d'étapes implique un temps important entre le prélèvement de l'échantillon susceptible de contenir des micro-organismes, et la prescription d'un traitement adapté pour le patient. De plus, l'utilisateur doit généralement réaliser manuellement des étapes de transfert de micro-organismes d'un premier milieu vers un deuxième milieu, ce qui peut induire des problèmes notamment de contamination mais également des risques pour la santé du manipulateur. A titre d'exemple, pour détecter la présence de béta-lactamases à spectre étendu (BLSE) dans des souches d'Escherichia coli et de Klebsiella pneumoniae, on peut utiliser une technique de diffusion telle que décrite dans la publication de Jacoby & Han (J Clin Microbiol. 34(4): 908-11, 1996) qui ne donne toutefois aucune information sur l'identification des souches testées : on peut déterminer si la bactéries est une bactérie productrice de BLSE ou non, mais on ne peut distinguer si une telle bactérie est une Escherichia coli ou une Klebsiella pneumoniae. Des substrats métaboliques sont également utilisés pour détecter la présence de BLSE ou Case HN. A ce titre, les laboratoires AES proposent un milieu dans une bi boîte associant un milieu Drigalski avec du céfotaxime et un milieu MacConkey avec de la ceftazidime. Les milieux Drigalski et MacConkey permettent de révéler l'acidification du Lactose, métabolisme présent chez un très grand nombre d'espèces d'entérobactéries. Toutefois, un tel milieu permet uniquement de distinguer des bactéries résistantes de bactéries non résistantes, mais ne permet pas de distinguer les bactéries exprimant une BLSE de celles exprimant une Case HN. Ce milieu ne permet pas non plus l'identification d'espèces particulières de bactéries, et ne permet pas, par exemple de discriminer les bactéries E. coli, de bactéries K pneumoniae. Dans le cas de la détection de mécanismes de résistance autre que BLSE, on peut citer la demande de brevet EP0954560 qui concerne la recherche des entérocoques résistants à la Vancomycine, en combinant la Vancomycine avec un milieu chromogène révélant deux activités enzymatiques (13-glucosidase et pyrrolidonyl-arylamidase). Toutefois, ce milieu chromogène permet de déterminer uniquement si les souches résistantes à la vancomycine appartiennent ou n'appartiennent pas au genre Enterococcus, mais ne permet pas d'identifier l'espèce ou les mécanismes de résistance impliqués, notamment s'il s'agit d'une résistance acquise ou sauvage. Ainsi, la caractérisation d'une espèce de microorganisme, puis l'identification de sa résistance à un traitement est longue et fastidieuse. Si le laboratoire rend au clinicien un dépistage positif alors que l'isolat est en fait dépourvu de microorganismes résistants, cela peut entraîner un traitement inutile et inadapté. Inversement, ne pas communiquer un dépistage positif qui sera ensuite confirmé retarde la mise en place de l'isolement du patient (et éventuellement d'une thérapeutique adaptée) d'une journée. Cela montre le besoin d'un test de confirmation rapide et fiable. La présente invention se propose donc d'améliorer l'état de la technique en présentant un nouvel outil de diagnostic permettant un gain de temps, de fiabilité et de pertinence dans la thérapie mise en oeuvre. Notre invention permet en une seule étape d'identifier les espèces de micro-organismes gram négatifs présents dans un échantillon et déterminer leur mécanisme de résistance afin de proposer un traitement adapté à chaque patient. Avant d'aller plus avant dans l'exposé de l'invention, les définitions suivantes sont 20 données afin de faciliter la compréhension de l'invention. Par milieu réactionnel, on entend un milieu comprenant tous les éléments nécessaires à la survie et/ou à la croissance de microorganismes, tels que les Staphylococcus aureus. Ce milieu réactionnel peut soit servir uniquement de milieu de révélation, soit de milieu de culture et de révélation. Dans le premier cas, la culture des microorganismes est 25 effectuée avant ensemencement et, dans le deuxième cas, le milieu réactionnel constitue également le milieu de culture. Le milieu réactionnel peut être solide, semi-solide ou liquide. Par milieu solide, on entend par exemple un milieu gélifié. Préférentiellement, le milieu selon l'invention est un milieu gélifié. L'agar est l'agent gélifiant traditionnel en microbiologie pour la culture 30 des microorganismes, mais il est possible d'utiliser de la gélatine ou de l'agarose. Un certain nombre de préparation sont disponibles dans le commerce, comme par exemple l'agar Columbia, la gélose Trypcase-soja, la gélose Mac Conkey, la gélose Sabouraud ou plus généralement celles décrites dans le Handbook of Microbiological Media (CRC Press). Le milieu réactionnel selon l'invention peut contenir d'éventuels autres additifs comme par exemple : des peptones, un ou plusieurs facteurs de croissance, des hydrates de carbone, un ou plusieurs agents sélectifs, des solutions tampons, un ou plusieurs gélifiants... Ce milieu réactionnel peut se présenter sous forme de liquide, de gel prêt à l'emploi, c'est à dire prêt à l'ensemencement en tube, flacon, ou sur boite de Petri. Lorsque la présentation est sous forme de gel en flacon, on réalise préférentiellement une régénération (passage à 100°C) préalable du milieu avant de couler en boîte de Petri. Il peut également s'agir d'un milieu en poudre ou en flacon qui avant d'être coulé en coulé en boîte de Petri, tube ou flacon est additionné d'un supplément. Préférentiellement, le milieu selon l'invention est un milieu sélectif, c'est à dire un milieu comprenant des composés qui privilégient la croissance des bactéries Gram-négatif. On peut citer notamment le citrate de sodium, le sulfite de sodium, des antibiotiques tels que la vancomycine, des antifongiques tels que l'amphotéricine B, la natamycine, le cycloheximide, des tensioactifs tels que les sels biliaires, le désoxycholate de sodium, les Tergitol, des colorants tels que le vert brillant, le cristal violet, la fuchsine, l'éosine, le bleu de méthylène. Préférentiellement, le milieu selon l'invention est un milieu sélectif comprenant des composés qui privilégient la croissance des bactéries beta lactamase à spectre étendu (BLSE). On peut citer notamment les céphalosporines. o céphalosporine de première génération, telle que : cefalexine, cefaloridine, 20 cefalotine, cefazoline, cefadroxil, cefazedone, cefatrizine, cefapirine, cefradine, cefacetrile, cefrodaxine, ceftezole o céphalosporine de deuxième génération, telle que : cefoxitine, cefuroxime, cefamandole, cefaclor, cefotetan, cefonicide, cefotiam, loracarbef, cefmetazole, cefprozil, ceforanide 25 o céphalosporines de troisième génération, telle que : cefotaxime, ceftazidime, cefsulodine, ceftriaxone, cefmenoxime, latamoxef, ceftizoxime, cefixime, cefodizime, cefetamet, cefpiramide, cefoperazone, cefpodoxime, ceftibuten, cefdinir, cefditoren, ceftriaxone, cefoperazone, cefbuperazone o céphalosporine de quatrième génération, telle que cefepime, cefpirome 30 A titre de bactéries gram négatives, on peut citer notamment les bactéries des genres suivants: Pseudomonas, Escherichia, Salmonella, Shigella, Enterobacter, Klebsiella, Serratia, Proteus, Campylobacter, Haemophilus, Morganella, Vibrio, Yersinia, Acinetobacter, Branhamella, Neisseria, Burkholderia, Citrobacter, Hafnia, Edwardsiella, Aeromonas, Moraxella, Pasteurella, Providencia, et Legionella. Par mécanisme de résistance aux beta-lactamines, on entend tout type de dispositif qui permet à un micro-organisme de rendre un traitement partiellement ou totalement inopérant sur ledit microorganisme, garantissant sa survie, ledit dispositif étant lié à l'expression d'une enzyme appartenant au groupe des (3-lactamases à spectre étendu ; d'une enzyme appartenant au groupe des céphalosporinases de classe C exprimée à un haut niveau Par marqueur de mécanisme de résistance aux beta-lactamines, on entend un composé permettant de mettre en évidence un tel mécanisme de résistance, tel que la cefepime et ses sels (Masuyoshi S. et al., 1989 ù � Comparison of the in vitro and in vivo antibacterial activities of cefepime (BMY-28142) with ceftazidime, cefuzonam, cefotaxime and cefmenoxime. �) Par inhibiteur de mécanisme de résistance autre que ledit mécanisme de résistance aux beta-lactamines, on entend un compose qui permet d'inhiber indirectement la croissance des organismes développant une résistance particulière, sans inhibition de bactéries gram négatives exprimant ledit mécanisme de résistance aux beta-lactamines, tel que la cloxacilline ( Jack et Richmond, 1970 ù �A comparative study of eight distinct betalactamases synthesized by gram-negative bacteria. �) pour l'inhibition des céphalosporinases de classe C Au sens de la présente invention, le substrat d'une activité enzymatique ou métabolique est choisi parmi tout substrat pouvant être hydrolysé en un produit qui permet la détection, directe ou indirecte d'une activité enzymatique ou d'un métabolisme, telle que notamment une activité osidase, préférentiellement une activité glucuronidase, glucosidase ou galactosidase. Il peut s'agir d'un substrat naturel ou synthétique. Le métabolisme du substrat provoque une variation des propriétés physico-chimiques du milieu réactionnel ou des cellules d'organismes. Cette variation peut être détectée par des méthodes physico-chimiques, notamment des méthodes optiques par l'ozil de l'opérateur ou à l'aide d'instruments, spectrométriques, électriques, magnétiques, ... Préférentiellement, il s'agit d'une variation des propriétés optiques, telles qu'une modification d'absorption, de fluorescence ou de luminescence. Comme substrat chromogène, on peut citer notamment les substrats à base d'indoxyl, flavone, alizarine, acridine, esculetine, phénoxazine, nitrophénol, nitroaniline, naphtol, catéchol, hydroxyquinoline, coumarine, aminophénol, dichloroaminophénol. Préférentiellement, le(s) substrat(s) utilisé(s) dans la présente invention est(sont) à base d'indoxyl. Comme substrat fluorescent, on peut citer notamment les substrats à base d'umbelliférone ou de coumarine, à base de résorufine, phénoxazine, naphtol, naphtylamine, 2'-hydroxyphényl-hétérocycle ou 2'-aminophényl-hétérocycle ou encore à base de fluorescéïne. Préférentiellement, le substrat utilisé dans la présente invention est 5-bromo-4-chloro-3-indoxyl-beta-D-glucopyranoside, préférentiellement en combinaison avec le 5-bromo- 6-chloro-3-indoxyl-beta-D-galactopyranoside. Autres substrats possibles ; substrats de beta-glucosidase : 5-Bromo-6-chloro-3-indoxyl-beta-glucoside ; Dihydroxyflavone-betaglucoside ; 3-hydroxyflavone-beta-glucoside, 3,4-Cyclohexénoesculétine-beta-glucoside (on ne parle pas du 3,4-cyclopentenoesculetin-beta-glucoside ?) ; 8-Hydroxyquinolinebeta-glucoside ; 5-Bromo-4-chloro-3-indoxyl-N-méthyl-beta-glucoside; 6-Chloro-3- indoxyl-beta-glucoside ; 5-Bromo-3-indoxyl-beta-glucoside ; 5-Iodo-3-indoxyl-beta- glucoside ;6-Iodo-3-indoxyl-beta-glucoside 6-Fluoro-3-indoxyl-beta-glucoside ; Alizarine-beta-glucoside ; Nitrophényl-beta-glucoside ; 4-Méthylumbelliferyl-beta- glucoside ; Naphtholbenzein-beta-glucoside ; Indoxyl-N-méthyl-beta-glucoside ; Naphtyl-beta-glucoside ; Aminophényl-beta-glucoside ; Dichloroaminophényl-beta- glucoside; substrats de beta-galactosidase : 5-Bromo-4-chloro-3-indoxyl-beta-galactoside ; Dihydroxyflavone-beta-galactoside ; 3,4-Cyclohexénoesculétine-beta-galactoside ; 8- Hydroxyquinoline-beta-galactoside ; 5-Bromo-4-chloro-3-indoxyl-N-méthyl-betagalactoside ; 6-Chloro-3-indoxyl-beta-galactoside ; 5-Bromo-3-indoxyl-beta-galactoside ; 5-Iodo-3-indoxyl-beta-galactoside ; 6-Fluoro-3-indoxyl-beta-galactoside ; Alizarine-beta- galactoside ; Nitrophényl-beta-galactoside ; 4-Méthylumbelliferyl-beta-galactoside ; Naphtholbenzein-beta-galactoside ; Indoxyl-N-méthyl-beta-galactoside ; Naphtyl-betagalactoside ; Aminophényl-beta-galactoside ; Dichloroaminophényl-beta-galactoside ; substrats de beta-glucuronidase : 5-Bromo-6-chloro-3-indoxyl-beta-glucuronide; Dihydroxyflavone-beta-glucuronide; 3,4-Cyclohexénoesculétine-beta-glucuronide; 8- Hydroxyquinoline-beta-glucuronide ; 5-Bromo-4-chloro-3-indoxyl- beta-glucuronide ; 5-Bromo-4-chloro-3-indoxyl-N-méthyl-beta-glucuronide ; 6-Chloro-3-indoxyl-betaglucuronide ; 5-Bromo-3-indoxyl-beta-glucuronide ; 5-Iodo-3-indoxyl-beta-glucuronide ; 6-Fluoro-3-indoxyl-beta-glucuronide ; Alizarine-beta-glucuronide ; Nitrophényl-beta- glucuronide ; 4-Méthylumbelliferyl-beta-glucuronide ; Naphtholbenzein-beta- glucuronide ; Indoxyl-N-méthyl-beta-glucuronide ; Naphtyl-beta-glucuronide ; Aminophényl-beta-glucuronide ; Dichloroaminophényl-beta-glucuronide ; substrats d'alpha-glucosidase, substrats d'alpha-galactosidase, substrats d'estérase, notamment de lipase, de phosphatase, substrats de cellobiosidase, substrats de ribosidase, substrats d'hexosaminidase. Les substrats de l'invention sont utilisables dans une large gamme de pH, notamment entre pH 5,5 et 10, préférentiellement entre 6,5 et 10. Lorsque le milieu selon l'invention comprend un substrat ou plusieurs substrats d'activité enzymatique beta glucosidase, la concentration en substrat(s) est préférentiellement comprise entre 0,01 et 2 g/1, encore plus préférentiellement entre 0,02 et 0,2 g/1, et, avantageusement, elle est entre 0,05 et 0,15 g/l. En effet, à cette concentration de substrat, on obtient un meilleur contraste de coloration. Préférentiellement, ledit substrat chromogénique, est choisi parmi un substrat de glucuronidase, de beta glucosidase et de beta galactosidase. Par échantillon biologique, on entend un échantillon clinique, issu d'un prélèvement de liquide biologique, ou un échantillon alimentaire, issu de tout type d'aliment. Cet échantillon peut être ainsi liquide ou solide et on peut citer d'une manière non limitative, un échantillon clinique de sang, de plasma, d'urines, de fécès, de prélèvements rectal, de nez, de gorges, de peaux, de plaies, de liquide céphalo-rachidien, un échantillon alimentaire d'eau, de boissons tels que le lait, un jus de fruits; de yaourt, de viande, d'oeufs, de légumes, de mayonnaise, de fromage ; de poisson..., un échantillon alimentaire issu d'une alimentation destinée aux animaux, tel que notamment un échantillon issu de farines animales. A ce titre, l'invention concerne un milieu réactionnel de bactéries gram négatives présentant un mécanisme de résistance aux beta-lactamines comprenant : • Un marqueur de mécanisme de résistance aux beta-lactamines qui est la cefépime, • Un inhibiteur de mécanisme de résistance, autre que ledit mécanisme de résistance aux beta-lactamines Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, ledit inhibiteur de mécanisme de résistance est la cloxacilline. Préférentiellement, la concentration en cloxacilline est comprise entre 0,05 et lg/1 et plus préférentiellement entre 0,1 et 0,3g/1. Avantageusement, elle est de 0,2g/l. Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, la concentration en cefepime est comprise entre 0,05 et 1 mg/1 et plus préférentiellement entre 0,10 0,5mg/1. Avantageusement, elle est de 0,25 mg/l. Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, le milieu réactionnel comprend en 5 outre un substrat d'une activité enzymatique ou métabolique, préférentiellement un substrat chromogénique. Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, ledit substrat chromogénique, est choisi parmi un substrat de glucuronidase, de beta glucosidase et de beta galactosidase. Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, la concentration en substrat 10 chromogénique est comprise entre 0,02 et 2g/l et plus préférentiellement entre 0,03 et 0,5g/l. Avantageusement, elle est de 0,1g/1. Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, ledit milieu comprend une combinaison d'au moins deux substrats chromogéniques. Selon un premier mode de réalisation, cette combinaison comprend un substrat de glucuronidase et un substrat de 15 beta glucosidase. Selon un deuxième mode de réalisation, cette combinaison comprend un substrat de beta galactosidase et un substrat de beta glucosidase. L'invention concerne également l'utilisation d'un milieu tel que défini ci avant pour la détection de bactéries gram négatives résistantes aux beta-lactamines, préférentiellement 20 des bacteries beta lactamase à spectre étendu (BLSE) L'invention concerne également un procédé de détection de bactéries gram négatives résistantes aux beta-lactamines caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes : 1. disposer d'un milieu réactionnel tel que défini ci avant, 2. ensemencer le milieu avec un échantillon biologique à tester, 25 3. laisser incuber, et 4. détecter la présence de bactéries gram négatives résistantes aux beta-lactamines. L'incubation est préférentiellement réalisée à une température comprise entre 30°C et 42°C. Les bactéries gram négatives résistantes aux beta-lactamines sont préférentiellement détectées par une activité glucuronidase, beta-glucosidase ou 30 beta-galactosidase spécifique qui permet d'obtenir des colonies colorées ou fluorescentes. Les autres espèces apparaissent incolores ou d'une couleur ou fluorescence différente de celle des colonies de bactéries Gram-négatif résistantes aux beta-lactamines. Io Les exemples ci dessous sont donnés à titre explicatif et n'ont aucun caractère limitatif. Ils permettront de mieux comprendre l'invention. EXEMPLE l Choix des souches: Les inventeurs ont sélectionné des souches permettant d'évaluer l'activité des antibiotiques vis à vis des espèces à Gram-négatif : entérobactéries et bacilles non-fermentants. En particulier, ont été utilisés des souches productrices de BLSE, de céphalosporinase de haut niveau (CaseHN) et des souches sans profil de résistance particulier, dites sauvages. Préparation des milieux : Les milieux testés étaient des milieux composés de la base peptonée du milieu Chrom ID CPS (bioMérieux réf 43541) à laquelle étaient rajoutés après autoclavage, dans des milieux en surfusion, 300 mg/1 de Cloxacilline et pour le milieu T : 4 mg/1 de Cefpodoxime, pour le milieu A : 0.25 mg/L de Céfépime, pour le milieu B : 3 mg/1 de Céfamandole et pour le milieu C : 3 mg/1 de Céfuroxime. Ensemencement des milieux : Les milieux sont ensemencés en réalisant un isolement selon la méthode des 3 cadrans à partir de suspensions bactériennes à 0.5McF. Les milieux sont ensuite incubés pendant 24 heures à 37 °C Lecture des milieux : Les milieux sont observés visuellement après 18 h et 24 heures d'incubation, la densité de croissance ainsi que les colorations et intensités de coloration sont évaluées suivant l'échelle ci-dessous : ou 0 : absence de croissance ou d'expression d'activité enzymatique (soit aucune coloration) + : faible croissance, ou activité enzymatique ++ : très forte densité de croissance ou forte activité enzymatique (coloration très intense)25 Résultats : o tu a.) a) a) cd E E o z mon ,~ ô uni E -o n - â c É M w M ~h Û Û H U T A B C Crois Act. Enz Crois Act. Enz Crois Act. Enz Crois Act. Enz Klebsiella oxytoca 0105100 caseHN 18 h ++ ++ - - + + + ++ 24 h ++ ++ - - + ++ ++ ++ Proteus mirabilis 0105105 caseHN _ 24 h - - - - - - - - Proteus mirabilis 0105109 18 h - - - - - - + ++ _ caseHN 24 h - - - - - - + ++ Enterobacter spp 9306069 caseHN 18 h ++ ++ ++ ++ ++ ++ ++ ++ 24 h ++ ++ ++ ++ ++ ++ ++ ++ Morganella morganii 9904104 caseHN 24 h - - - - - - - - Enterobacter spp 0503037 18h ++ ++ - - ++ ++ ++ ++ sauvage 24 h ++ ++ - - ++ ++ ++ ++ Serratia fonticola 8001047 18 h + + - - + + ++ ++ sauvage 24 h + ++ - .. + ++ ++ ++ Escherichia coli 0411146 ESBL 18 h ++ ++ ++ ++ ++ ++ ++ ++ 24 h ++ ++ ++ ++ ++ ++ ++ ++ Escherichia coli 0505101 ESBL 18 h + ++ ++ ++ ++ ++ ++ ++ 24 h ++ ++ ++ ++ ++ ++ ++ ++ Klebsiella oxytoca 0502094 ESBL 18 h ++ ++ ++ ++ ++ ++ ++ ++ 24 h ++ ++ ++ ++ ++ ++ ++ ++ Enterobacter aerogenes 0502112 18 h ++ ++ ++ ++ ++ ++ ++ ++ ESBL 24 h ++ ++ ++ ++ ++ ++ ++ ++ Proteus mirabilis 9709068 18 h + + + + + - + + ESBL 24h + + + + + + + ++ Conclusion : Les 4 molécules permettent toutes une bonne croissance et expressions des 5 activités enzymatiques pour les souches productrices d'ESBL. Cependant, seule la Céfépime permet une bonne discrimination entre les souches productrices d'ESBL, les souches productrices d'une Case HN ou les souches de taxons sauvages. C'est donc l'antibiotique qui permet de détecter les souches ESBL avec la meilleure sensibilité et spécificité. 1110 REVENDICATIONS1) Milieu réactionnel de bactéries gram négatives présentant un mécanisme de résistance aux beta-lactamines comprenant : • un marqueur de mécanisme de résistance aux beta-lactamines qui est le cefepime, • un inhibiteur de mécanisme de résistance, autre que ledit mécanisme de résistance aux beta-lactamines 2) Milieu réactionnel selon la revendication 1 caractérisé en ce que ledit inhibiteur de mécanisme de résistance est la cloxacilline 3) Milieu réactionnel selon la revendication 1 ou 2 caractérisé en ce que la concentration en cefepime est comprise entre 0,05 et lmg/l et plus préférentiellement entre 0,1 et 0,5mg/1. 4) Milieu réactionnel selon l'une quelconque des revendications 1 a 3 comprenant en outre un substrat d'une activité enzymatique ou métabolique, préférentiellement un substrat chromogénique. 5) Milieu réactionnel selon la revendication 4 selon laquelle ledit substrat chromogénique, est choisi parmi un substrat de glucuronidase, de beta glucosidase et de beta galactosidase 6) Utilisation d'un milieu réactionnel selon l'une quelconque des revendications 1 à 5 pour la détection de bactéries gram négatives résistantes aux beta-lactamines 7) Utilisation d'un milieu réactionnel selon la revendication 6 selon laquelle les bactéries gram négatives résistantes aux beta-lactamines sont des bacteries beta lactamase à spectre étendu (BLSE) 8) Procédé de détection de bactéries gram négatives résistantes aux beta-lactamines caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes : a) disposer d'un milieu réactionnel selon l'une quelconque des revendications 1 à 5, b) ensemencer le milieu avec un échantillon biologique à tester, c) laisser incuber, et d) détecter la présence de bactéries gram négatives résistantes aux beta-lactamines.