Brevet FR2948686A1 — publié le 20110204

La présente invention concerne de nouveaux composés utilisables à titre d'indicateurs de pH et/ou de substrats enzymatiques pour la détection d'activité peptidase. Ces substrats sont utilisables dans les applications comportant une étape d'hydrolyse enzymatique produisant un signal physico-chimique notamment en microbiologie, biochimie, immunologie, biologie moléculaire, histologie, etc. L'invention concerne également des milieux réactionnels contenant de tels substrats, l'utilisation des substrats ou des milieux pour la détection d'activités peptidases et/ou la différenciation de bactéries à Gram positif par rapport à des bactéries à Gram négatif et des procédés d'utilisation. Il existe actuellement de très nombreux milieux permettant la détection de microorganismes. Cette détection peut être basée notamment sur l'utilisation de substrats particuliers, spécifiques d'une enzyme du microorganisme que l'on souhaite détecter. D'une manière générale, les substrats synthétiques d'enzymes sont constitués de telle façon que le substrat et le produit de son métabolisme par l'enzyme cible possèdent des propriétés physico-chimiques différentes, permettant de les distinguer et d'évaluer si tout ou partie du substrat a été converti en produit par l'enzyme. Les substrats d'hydrolase, sont généralement constitués d'une première partie spécifique de l'activité enzymatique à révéler, et d'une seconde partie faisant office de marqueur, généralement chromogène ou fluorescent. Ainsi dans le cas des bactéries, par le choix des substrats, selon qu'il y a réaction ou non, il est possible de caractériser la nature d'un microorganisme. Une activité peptidase peut notamment être utilisée pour révéler un groupe, un genre ou une espèce de bactéries. Ainsi, l'activité alanineaminopeptidase, par exemple, permet de différencier les bactéries à Gram négatif des bactéries à Gram positif. Des substrats chromogènes enzymatiques pour la détection d'activité peptidase sont connus de l'état de la technique. On peut citer notamment la publication de Manafi (Manafi et al, Microbiol Rev 55(3) : 335-348, 1991), qui est une revue de substrats enzymatiques utilisés en microbiologie. Toutefois, les substrats d'aminopeptidase décrits libèrent par hydrolyse des composés diffusant dans le milieu (betanaphtylamine, 7-amino-4-methylcoumarine). De ce fait, en milieu réactionnel hétérogène (colonies sur boites de Petri, coupe histologique...), il n'est pas possible de localiser précisément le lieu de l'hydrolyse. On peut citer également les substrats décrits dans les demandes de brevet WO 98/04735 et WO 99/38995 déposées par la Demanderesse. Toutefois, bien que ces substrats diffusent peu en milieu de culture, ils présentent certains inconvénients : leur synthèse est difficile, la pureté est réduite, les rendements faibles et ils sont toxiques vis-à-vis de certains micro-organismes. La présente invention propose donc l'utilisation de nouveaux composés, soit à titre d'indicateurs de pH, soit à titre de substrats de peptidase, permettant la détection de microorganismes. Comparativement aux substrats existants, ces nouveaux composés sont de synthèse aisée, et peuvent être utilisés notamment en milieux gélifiés pour la détection de micro-organismes car ils produisent une coloration ne diffusant peu ou pas dans le milieu réactionnel. Dans le cadre d'une utilisation comme substrat enzymatique, cela permet de repérer une colonie ou une organelle exprimant une activité peptidase parmi d'autres ne l'exprimant pas. Avant d'aller plus avant dans la description de l'invention, les définitions ci dessous sont données afin de faciliter l'exposé de l'invention. Par substrat enzymatique, on entend un substrat pouvant être hydrolysé par une enzyme en un produit permettant la détection, directe ou indirecte d'un microorganisme, d'une cellule ou d'une organelle. Ce substrat comprend notamment une première partie spécifique de l'activité enzymatique à révéler et une seconde partie faisant office de marqueur. Les composés selon l'invention utilisés comme substrats sont adaptés à une utilisation en cytométrie en flux, car le produit de l'hydrolyse restant principalement localisé dans la cellule exprimant l'activité enzymatique, il est possible de compter spécifiquement les cellules exprimant cette activité, voire de les séparer du reste de l'échantillon. Les composés selon l'invention utilisés comme substrats sont également bien adaptés à une utilisation en histoenzymologie, car le produit d'hydrolyse restant principalement localisé sur le lieu de l'hydrolyse, il est possible d'identifier spécifiquement les cellules ou organelles exprimant cette activité au sein d'un tissu. Du fait de leur faible toxicité, les composés selon l'invention sont bien adaptés, respectivement comme indicateurs de pH, ou pour le suivi d'activité peptidase en culture cellulaire. Les composés selon l'invention sont particulièrement bien adaptés à une utilisation en milieu de détection et/ou d'identification car ils produisent une coloration ou une fluorescence ne diffusant pas dans le milieu réactionnel. Dans la présente demande, le terme coloration est employé pour couvrir une coloration, absorption de lumière dans le spectre visible, ou une fluorescence, absorption à une longueur d'onde (Xex) et émission à une longueur d'onde supérieure (Xem, Xem > Xex)• Les composés de l'invention peuvent être salifiés, c'est à dire sous forme de sel tel que chlorure, bromure, iodure ou trifluoroacétate. Par indicateur de pH, on entend une substance chimique dont la couleur et/ou la fluorescence varie en fonction des modifications de pH du milieu, lesdites modifications étant liées ou non au métabolisme du ou des microorganismes en croissance sur ledit milieu. Par peptidase, on entend une enzyme capable de cliver par hydrolyse le groupement amide formé entre le reste acyle d'un peptide et une amine primaire. Par aminopeptidase, on entend une enzyme capable de cliver par hydrolyse le groupement amide formé entre un acyle d'acide aminé et une amine primaire. Dans la présente demande, le terme � peptidase � peut désigner, selon les cas, tant une peptidase qu'une aminopeptidase telles que définies précédemment. Par peptide, on entend une chaîne peptidique comprenant de 1 à 10 acides aminés, préférentiellement de 1 à 4 acides aminés. Préférentiellement, le peptide est un di-Alanine ou tri-Alanine. Par acide aminé, on entend tout acide aminé connu de l'homme du métier, naturel ou non. Selon un mode particulier de réalisation de l'invention, l'acide aminé est une beta-Alanine ou L-Alanine ou D-Alanine, ou une Glycine, Pyrroglutamyl, ... Ledit peptide peut comprendre un agent de blocage en son extrémité N terminale. Les agents de blocage selon l'invention comprennent tout agent de blocage connu de l'homme du métier qui est capable de protéger les amines. A titre d'exemple, on peut citer le t-Butoxycarbonyle (N-tBOC), le 9-Fluorenyloxycarbonyle, un agent de solubilisation tel que le Succinyle, ou bien un acide aminé non métabolisable, c'est-à- dire non naturel, tel que l'acide pipécolique ou la forme D d'un acide aminé, tel que la D-Phénylalanine. Les agents de blocage ne sont pas systématiquement présents dans les composés de l'invention. Par groupement alkyle, on entend une chaîne de groupements hydrocarbonés saturés, tel que notamment un alkyle en C1-C6, c'est a dire un alkyle droit ou ramifié ayant de 1 à 6 atomes de carbone. A titre d'exemple, on peut citer le méthyle, l'éthyle, le propyle, l'iso-propyle, le butyle, le t-butyle, le pentyle, l'iso-pentyle et l'hexyle. Par groupement aryle, on entend un groupement fonctionnel (ou substituant) qui dérive d'un noyau aromatique tel que notamment un noyau aromatique en C6-Clo, notamment phényle, benzyle, 1-naphtyle ou 2-naphtyle. Par groupement carboxyle, on entend notamment un groupe fonctionnel composé d'un atome de carbone, lié par une double liaison à un premier atome d'oxygène, et par une liaison simple à un second atome d'oxygène, lui-même chargé négativement ou relié à un atome d'hydrogène. En fonction du pKa de la molécule et du pH du milieu, le groupement carboxyle peut être sous forme ionisée, c'est à dire sans H lié au second atome d'oxygène, qui est alors chargé négativement. Par milieu réactionnel, on entend un milieu comprenant tous les éléments nécessaires à l'expression d'un métabolisme et/ou à la croissance de microorganismes, d'une cellule ou d'une organelle. Ce milieu réactionnel peut être utilisé en cytométrie en flux, histoenzymologie, culture cellulaire ... ou en tant que milieu de détection et/ou d'identification de microorganismes. Le milieu réactionnel peut comprendre un ou plusieurs éléments en combinaison, tels que des acides aminés, des peptones, des hydrates de carbone, des nucléotides, des minéraux, des vitamines, des antibiotiques, des tensioactifs, des tampons, des sels de phosphate, d'ammonium, de sodium, de métaux. Le milieu peut comprendre également un colorant. A titre indicatif, on peut citer comme colorant le bleu d'Evans, du rouge neutre, du sang de mouton, du sang de cheval, un opacifiant tel que l'oxyde de Titane, de la nitroaniline, du vert malachite, du vert brillant ... Le milieu réactionnel peut être solide, semi-solide ou liquide. Par milieu solide, on entend par exemple un milieu gélifié. L'agar est l'agent gélifiant traditionnel en microbiologie pour la culture des microorganismes, mais il est possible d'utiliser de la gélatine ou de l'agarose. Un certain nombre de préparations sont disponibles dans le commerce, comme par exemple l'agar Columbia, la gélose Trypcase-soja, la gélose Mac Conkey, la gélose Sabouraud ou plus généralement celles décrites dans le Handbook of Microbiological Media (CRC Press). Le milieu réactionnel peut être un milieu de détection et/ou d'identification, c'est à dire un milieu de révélation ou un milieu de culture et de révélation. Dans le premier cas, la culture des microorganismes est effectuée avant ensemencement et, dans le deuxième cas, le milieu de détection et/ou d'identification constitue également le milieu de culture. Par échantillon biologique, on entend un échantillon clinique, issu d'un prélèvement de liquide biologique ou un échantillon alimentaire, issu de tout type d'aliment ou un échantillon cosmétique ou pharmaceutique issu de toute préparation cosmétique ou pharmaceutique. Cet échantillon peut être ainsi liquide ou solide et on peut citer d'une manière non limitative, un échantillon clinique de sang, de plasma, d'urines, de fécès, de prélèvements de nez, de gorges, de peaux, de plaies, de liquide céphalo-rachidien, un échantillon alimentaire d'eau, de boissons tels que le lait, un jus de fruits; de yaourt, de viande, d'oeufs, de légumes, de mayonnaise, de fromage ; de poisson..., un échantillon alimentaire issu d'une alimentation destinée aux animaux, tel que notamment un échantillon issu de farines animales. L'échantillon peut également être issu d'un prélèvement de l'environnement clinique, d'élevage ou de production alimentaire, cosmétique ou pharmaceutique. Par prélèvement d'environnement, on entend notamment un prélèvement de surface, de liquide, de matière première ou de produit. Par échantillon, on entend donc le prélèvement en lui même (écouvillon, selles, aliments, ...) aussi bien que des colonies de microorganismes issus dudit prélèvement (par exemple après isolement sur un milieu de culture gélifié, ou dans un bouillon d'enrichissement ensemencé avec ledit prélèvement). Au sens de la présente invention, le terme microorganisme recouvre les bactéries, les levures, les moisissures et plus généralement, les organismes généralement unicellulaires, invisibles à l'oeil nu, qui peuvent être multipliés et manipulés en laboratoire. A titre de bactéries à Gram négatif, on peut citer les bactéries des genres suivants : Pseudomonas, Escherichia, Salmonella, Shigella, Enterobacter, Klebsiella, Serratia, Proteus, Campylobacter, Haemophilus, Morganella, Vibrio, Yersinia, Acinetobacter, Branhamella, Neisseria, Burkholderia, Citrobacter, Hafnia, Edwardsiella, Aeromonas, Moraxella, Pasteurella, Providencia, Actinobacillus, Alcaligenes, Bordetella, Cedecea, Erwinia, Pantoea, Ralstonia, Stenotrophomonas, Xanthomonas et Legionella. A titre de bactéries à Gram positif, on peut citer les bactéries des genres suivants : Aerococcus, Enterococcus, Streptococcus, Staphylococcus, Bacillus, Lactobacillus, Listeria, Clostridium, Gardnerella, Kocuria, Lactococcus, Leuconostoc, Micrococcus, Falkamia, Gemella, Pediococcus, Mycobacterium et Corynebacterium. A titre de levures, on peut citer les levures des genres suivants : Candida, Cryptococcus, Saccharomyces et Trichosporon. Préférentiellement, le microorganismes est choisi parmi Escherichia coli, Serratia marcescens, Enterobacter cloacae, Salmonella typhimurium, Providencia rettgeri, Yersinia enterocolitica, Pseudomonas aeruginosa, Bacillus subtilis, Listeria l0 monocytogenes, Staphylococcus aureus, Streptococcus pyogenes, Enterococcus faecalis. A ce titre l'invention concerne l'utilisation d'un composé de la formule (I) suivante, comme substrat enzymatique pour la détection d'une activité peptidase et/ou une 15 variation de pH : selon laquelle : • YI est un peptide, H ou un alkyl • Wl, W2, W3 et W4 sont indépendamment H, Br, Cl, F, I, alkyle, alkoxy, 20 thiométhyle, perfluoroalkyle, nitro, cyano, carboxyle (incluant ses esters ou amides) ou toute combinaison de ceux-ci • n=0, I ou2 • UestNouN+R et V est CZ6 N ou N+R ou bien V est N ou N+R et U est CZ6, (I) • R est H, alkyle, aralkyle, aryle, alcanoïque ou alkylsulfonique • ZI, Z2, Z3, Z4, Z5 et Z6, sont indépendamment H, Br, Cl, F, 1, alkyle, aryle, alkoxy, perfluoroalkyle, nitro, cyano, carboxyle, sulfonyle, incluant les esters ou amides de carboxyle ou sulfonyle et leurs sels. Lorsque ledit composé de formule (I) est utilisé pour détecter uniquement une variation de pH, YI est H ou un alkyl. Lorsque ledit composé de formule (I) est utilisé pour la détection d'une activité peptidase, YI est un peptide. Préférentiellement U ou V est N. Lorsque ledit composé de formule (I) est utilisé pour la détection d'une activité peptidase et d'une variation de pH, YI est un peptide. Préférentiellement U ou V est N. Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, YI est un peptide, préférentiellement choisi parmi l'alanine, l'asparagine, la glutamine, le tyrosine et Trialanyl. Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, n = 1 Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, W1, W2, W3 et W4 sont indépendamment H Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, U est CH et V est N ou N+R, préférentiellement N+CH3 Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, V est CH et U est N ou N+R, préférentiellement N+CH3 Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, ZI, Z2, Z3, Z4, Z5, et Z6 sont indépendamment H Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, L-Alanyl-4-(4'-amidophenyl)-2- méthyl-quinoline, L-Alanyl-4-(4'-amidostyryl)-N-benzyl-quinolinium TFA, L- Glutamyl-4-(4'-amidostyryl)-N-benzyl-quinolinium TFA, beta-Alanyl-4-(4'-amidostyryl)-N-benzyl-quinolinium TFA, L-Alanyl-4-(4'-amidostyryl)-N-methylquinolinium TFA, D-Alanine-N-méthyl-4-(4'-aminostyryl)-quinolinium (dichlorure), L-Alanyl-2-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium, Z-Alanyl-2-(4'-amidostyryl)-N- méthyl-quinolinium, L-Alanyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium (dichlorure), L-Alanyl-L-alanyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium (dichlorure), L-Alanyl-L- alanyl-L-alanyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium (dichlorure), y- Aminobutyryl-4-(4'-amidostyryl)-N-methylquinolinium di-Cl, L-Asparaginyl-4-(4'- amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium-bis-TFA, a-Aspartyl-4-(4'-amidostyryl)-N-methylquinolinium dichloride, (3-Aspartyl-4-(4'-amidostyryl)-N-methylquinolinium dichloride, Glycyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium (dichlorure), L-gamma- Glutamyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium (dichlorure), Glycyl-4-(4'- amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium chloride, L-Leucyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthylquinolinium dihydrochloride, L-Methionyl-4-(4'-amidostyryl)-N-methyl-quinolinium di-Cl, Pyroglutamyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium iodide, Sarcosinyl-4-(4'-amidostyryl)-N-methyl-quinolinium dichloride, L-Tryptophanyl-4-(4-amidostyryl)-N- méthyl-quinolinium dihydrochloride, L-Tyrosyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl- quinolinium dihydrochloride, beta-Alanyl-2-(4'-amidostyryl)-N-methyl-quinolinium TFA, L-Prolyl-2-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium (HBr), Z-Arginyl-2-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium, L-Pyroglutamyl -2-(4'-amidostyryl)-N-méthylquinolinium, L-Alanyl-4-(4'-amidostyryl)quinoline TFA, B-Alanyl-4-(4'-amidostyryl)- quinoline, L-Glutamyl-4-(4'-amidostyryl)quinoline TFA, Glycyl-4-(4'- amidostyryl)quinoline TFA, Pyroglutamyl-4-(4'-amidostyryl) quinoline, L-Alanyl-2- (4'-amidostyryl)-quinoline, B-Alanyl-2-(4'-amidostyryl)-quinoline, Glycyl-2-(4'- amidostyryl)quinoline TFA, L-Alanyl-2-(2'-pyridyl)-4-(4"-amidostyryl)-quinoline Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, ledit composé est choisi parmi : BAlanyl-2-(4'-amidostyryl)-quinoline ((3-Ala-ASQ), L-Tyrosyl-4-(4'-amidostyryl)-N- méthyl-quinolinium dihydrochloride (Tyr-ASQM+), L-Asparaginyl-4-(4'-amidostyryl)- N-méthyl-quinolinium-bis-TFA (Asn-ASQM+), L-gamma-Glutamyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium (dichlorure) (y-Glu-ASQM+), L-Alanyl-L-alanyl-L-alanyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium (dichlorure) (Tri-Ala-ASQM+) L'invention concerne également un procédé pour la détection chez des micro-organismes d'une activité peptidase et/ou d'une variation de pH, caractérisé en ce qu'il comprend, ou est constitué par les étapes suivantes : a) disposer d'un milieu de détection et/ou d'identification comprenant composé de la formule (I) suivante : Y~ (I) selon laquelle : • Y1 est un peptide, H ou un alkyl • W1, W2, W3 et W4 sont indépendamment H, Br, Cl, F, I, alkyle, alkoxy, thiométhyle, perfluoroalkyle, nitro, cyano, carboxyle (incluant ses esters ou amides) ou toute combinaison de ceux-ci • n=0, l ou2 • U est N ou N+R et V est CZ6 N ou N+R ou bien V est N ou N+R et U est CZ6, • R est H, alkyle, aralkyle, aryle, alcanoïque ou alkylsulfonique • Z1, Z2, Z3, Z4 et Z5, sont indépendamment H, Br, Cl, F, I, alkyle, aryle, alkoxy, perfluoroalkyle, nitro, cyano, carboxyle, sulfonyle, incluant les esters ou amides de carboxyle ou sulfonyle et leurs sels. b) ensemencer le milieu avec un échantillon biologique à tester, c) laisser incuber, et d) révéler la présence d'au moins une activité peptidase ou une variation de pH Lorsque ledit procédé est un procédé pour détecter uniquement une variation de pH, Y1 est H ou un alkyl. Lorsque ledit procédé est un procédé pour la détection chez des micro-organismes d'une activité peptidase, Y1 est un peptide. Préférentiellement U ou V est N. Lorsque ledit procédé est un procédé pour la détection chez des micro-organismes d'une activité peptidase et d'une variation de pH, Y1 est un peptide. Préférentiellement U ou V est N. Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, YI est un peptide, préférentiellement choisi parmi l'alanine, l'asparagine, la glutamine, le tyrosine Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, n = 1 Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, Wi, W2, W3 et W4 sont indépendamment H Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, U est CH et V est N ou N+R, préférentiellement N+CH3 Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, V est CH et U est N ou N+R, préférentiellement N+CH3 Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, Z1, Z2, Z3 et Z4, Z5, et Z6 sont indépendamment H Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, L-Alanyl-4-(4'-amidophenyl)-2-méthyl-quinoline, L-Alanyl-4-(4'-amidostyryl)-N-benzyl-quinolinium TFA, L- Glutamyl-4-(4'-amidostyryl)-N-benzyl-quinolinium TFA, beta-Alanyl-4-(4'-amidostyryl)-N-benzyl-quinolinium TFA, L-Alanyl-4-(4'-amidostyryl)-N-methylquinolinium TFA, D-Alanine-N-méthyl-4-(4'-aminostyryl)-quinolinium (dichlorure), L-Alanyl-2-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium, Z-Alanyl-2-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium, L-Alanyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium (dichlorure), L-Alanyl-L-alanyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium (dichlorure), L-Alanyl-L- alanyl-L-alanyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium (dichlorure), Y- Aminobutyryl-4-(4'-amidostyryl)-N-methylquinolinium di-Cl, L-Asparaginyl-4-(4'- amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium-bis-TFA, a-Aspartyl-4-(4'-amidostyryl)-N- methylquinolinium dichloride, (3-Aspartyl-4-(4'-amidostyryl)-N-methylquinolinium dichloride, Glycyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium (dichlorure), L-gamma- Glutamyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium (dichlorure), Glycyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium chloride, L-Leucyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthylquinolinium dihydrochloride, L-Methionyl-4-(4'-amidostyryl)-N-methyl-quinolinium di-Cl, Pyroglutamyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium iodide, Sarcosinyl-4-(4'- amidostyryl)-N-methyl-quinolinium dichloride, L-Tryptophanyl-4-(4-amidostyryl)-N- méthyl-quinolinium dihydrochloride, L-Tyrosyl-4-(4 ' -am ido styryl)-N-méthylquinolinium dihydrochloride, beta-Alanyl-2-(4'-amidostyryl)-N-methyl-quinolinium TFA, L-Prolyl-2-(4'-amidostyry l)-N-méthyl-quinolinium (HBr), Z-Arginy1-2-(4'- amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium, L-Pyroglutamyl -2-(4'-amidostyryl)-N-méthylquinolinium, L-Alanyl-4-(4'-amidostyryl)quinoline TFA, 13-Alanyl-4-(4'-amidostyryl)-quinoline, L-Glutamyl-4-(4'-amidostyryl)quinoline TFA, Glycyl-4-(4'-amidostyryl)quinoline TFA, Pyroglutamyl-4-(4'-amidostyryl) quinoline, L-Alanyl-2- (4' -am idostyryl)-quinol ine, 13-Alanyl-2-(4'-amidostyryl)-quinoline, Glycyl-2-(4'- amidostyryl)quino1ine TFA, L-Alanyl-2-(2'-pyridyl)-4-(4"-amidostyryl)-quinoline Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, ledit composé est choisi parmi : BAlanyl-2-(4'-amidostyryl)-quinoline (13-Ala-ASQ), L-Tyrosyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium dihydrochloride (Tyr-ASQM+), L-Asparaginyl-4-(4'-amidostyryl)- l0 N-méthyl-quinolinium-bis-TFA (Asn-ASQM+), L-gamma-Glutamyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium (dichlorure) (y-Glu-ASQM+), L-Alanyl-L-alanyl-L-alanyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium (dichlorure) (Tri-Ala-ASQM+) L'ensemencement des microorganismes peut être réalisé par toutes les techniques 15 d'ensemencement connues de l'homme du métier. Une étape d'incubation peut être réalisée à une température pour laquelle l'activité enzymatique que l'on souhaite détecter est optimale, que l'homme du métier peut choisir aisément selon l'activité enzymatique à détecter. L'étape d) peut s'effectuer par un examen visuel, par colorimétrie ou fluorimétrie. Lors de l'étape d), on peut révéler la présence de l'activité 20 peptidase ou la variation de pH, seule ou en combinaison avec au moins une autre activité enzymatique. Préférentiellement, le microorganismes est choisi parmi Escherichia coli, Serratia marcescens, Enterobacter cloacae, Salmonella typhimurium, Providencia rettgeri, Yersinia enterocolitica, Pseudomonas aeruginosa, Bacillus subtilis, Listeria 25 monocytogenes, Staphylococcus aureus, Streptococcus pyogenes, Enterococcus faecalis. L'invention concerne également un procédé pour la différenciation chez des bactéries de leur appartenance aux bactéries à Gram positif ou aux bactéries à Gram négatif, 30 caractérisé en ce qu'il comprend par les étapes suivantes : a) disposer d'un milieu de détection et/ou d'identification comprenant composé de la formule (I) suivante, comme substrat enzymatique pour la détection d'une activité peptidase et/ou d'une variation de pH : Y1 (I) selon laquelle : • Y1 est un peptide, H ou un alkyl • W1, W2, W3 et W4 sont indépendamment H, Br, Cl, F, I, alkyle, alkoxy, thiométhyle, perfluoroalkyle, nitro, cyano, carboxyle (incluant ses esters ou amides) ou toute combinaison de ceux-ci • n=0, l ou2 • U est N ou N+R et V est CZ6 N ou N+R ou bien V est N ou N+R et U est CZ6, • R est H, alkyle, aralkyle, aryle, alcanoïque ou alkylsulfonique • Z1, Z2, Z3, Z4 et Z5, sont indépendamment H, Br, Cl, F, I, alkyle, aryle, alkoxy, perfluoroalkyle, nitro, cyano, carboxyle, sulfonyle, incluant les esters ou amides de carboxyle ou sulfonyle et leurs sels. b) ensemencer le milieu avec un échantillon biologique à tester, c) laisser incuber, et d) révéler la présence d'au moins une activité peptidase Lorsque ledit milieu est un milieu pour détecter uniquement une seule variation de pH, Y1 est H ou un alkyl Lorsque ledit milieu est un milieu pour détecter une activité peptidase, Y1 est un peptide. Préférentiellement U ou V est N. Lorsque ledit milieu est un milieu pour détecter une activité peptidase, et une variation de pH, Y1 est un peptide. Préférentiellement U ou V est N. Comme indiqué précédemment, l'ensemencement des microorganismes peut être réalisé par toutes les techniques d'ensemencement connues de l'homme du métier. Une étape d'incubation peut être réalisée à une température pour laquelle l'activité enzymatique que l'on souhaite détecter est optimale, que l'homme du métier peut choisir aisément selon l'activité enzymatique à détecter. L'étape d) peut s'effectuer par un examen visuel, par colorimétrie ou fluorimétrie. Lors de l'étape d), on peut révéler la présence de l'activité peptidase, seule ou en combinaison avec d'autres activités enzymatiques. Dans certains cas, il peut être avantageux d'effectuer l'étape d) en présence d'un acide, tel que l'acide acétique. Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, Y1 est un peptide, préférentiellement choisi parmi l'alanine, l'asparagine, la glutamine, le tyrosine Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, n = 1 Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, W1, W2, W3 et W4 sont indépendamment H Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, U est CH et V est N ou N+R, préférentiellement N+CH3 Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, V est CH et U est N ou N+R, préférentiellement N+CH3 Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, Z1, Z2, Z3 et Z4, Z5, et Z6 sont indépendamment H Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, L-Alanyl-4-(4'-amidophenyl)-2-méthyl-quinoline, L-Alanyl-4-(4'-amidostyryl)-N-benzyl-quinolinium TFA, L- Glutamyl-4-(4'-amidostyryl)-N-benzyl-quinolinium TFA, beta-Alanyl-4-(4'- amidostyryl)-N-benzyl-quinolinium TFA, L-Alanyl-4-(4'-amidostyryl)-N-methyl- quinolinium TFA, D-Alanine-N-méthyl-4-(4'-aminostyryl)-quinolinium (dichlorure), L-Alanyl-2-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium, Z-Alanyl-2-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium, L-Alanyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium (dichlorure), L-Alanyl-L-alanyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium (dichlorure), L-Alanyl-L- alanyl-L-alanyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium (dichlorure), y- Aminobutyryl-4-(4'-amidostyryl)-N-methylquinolinium di-Cl, L-Asparaginyl-4-(4'- amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium-bis-TFA, a-Aspartyl-4-(4'-amidostyryl)-N-methylquinolinium dichloride, (3-Aspartyl-4-(4'-amidostyryl)-N-methylquinolinium dichloride, Glycyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium (dichlorure), L-gamma- Glutamyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium (dichlorure), Glycyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium chloride, L-Leucyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthylquinolinium dihydrochloride, L-Methionyl-4-(4'-amidostyryl)-N-methyl-quinolinium di-Cl, Pyroglutamyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium iodide, Sarcosinyl-4-(4'- amidostyryl)-N-methyl-quinolinium dichloride, L-Tryptophanyl-4-(4-amidostyryl)-N- méthyl-quinolinium dihydrochloride, L-Tyrosyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthylquinolinium dihydrochloride, beta-Alanyl-2-(4'-amidostyryl)-N-methyl-quinolinium TFA, L-Prolyl-2-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium (HBr), Z-Arginyl-2-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium, L-Pyroglutamyl -2-(4'-amidostyryl)-N-méthyl- quinolinium, L-Alanyl-4-(4'-amidostyryl)quinoline TFA, 13-Alanyl-4-(4'-amidostyryl)- quinoline, L-Glutamyl-4-(4'-amidostyryl)quinoline TFA, Glycyl-4-(4'- amidostyryl)quinoline TFA, Pyroglutamyl-4-(4'-amidostyryl) quinoline, L-Alanyl-2- (4'-amidostyryl)-quinoline, f3-Alanyl-2-(4'-amidostyryl)-quinoline, Glycyl-2-(4'- amidostyryl)quinoline TFA, L-Alanyl-2-(2'-pyridyl)-4-(4"-amidostyryl)-quinoline Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, ledit composé est choisi parmi : 13-Alanyl-2-(4'-amidostyryl)-quinoline ((3-Ala-ASQ), L-Tyrosyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium dihydrochloride (Tyr-ASQM+), L-Asparaginyl-4-(4'-amidostyryl)- N-méthyl-quinolinium-bis-TFA (Asn-ASQM+), L-gamma-Glutamyl- 4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium (dichlorure) (y-Glu-ASQM+), L-Alanyl- L-alanyl-L-alanyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium (dichlorure) (Tri-Ala-ASQM+) Préférentiellement, le microorganismes est choisi parmi Escherichia coli, Serratia marcescens, Enterobacter cloacae, Salmonella typhimurium, Providencia rettgeri, Yersinia enterocolitica, Pseudomonas aeruginosa, Bacillus subtilis, Listeria monocytogenes, Staphylococcus aureus, Streptococcus pyogenes, Enterococcus faecalis. L'invention concerne également un milieu de détection et/ou d'identification de microorganismes comprenant un composé de la formule (I) suivante pour détecter une activité peptidase et/ou une variation de pH : Y~ (I) selon laquelle : • YI est un peptide, H ou un alkyl • W1, W2, W3 et W4 sont indépendamment H, Br, Cl, F, I, alkyle, alkoxy, thiométhyle, perfluoroalkyle, nitro, cyano, carboxyle (incluant ses esters ou amides) ou toute combinaison de ceux-ci • n=0, 1 ou2 • U est N ou N+R et V est CZ6 N ou N+R ou bien V est N ou N+R et U est CZ6, • R est H, alkyle, aralkyle, aryle, alcanoïque ou alkylsulfonique • Z1, Z2, Z3, Z4 et Z5, sont indépendamment H, Br, Cl, F, I, alkyle, aryle, alkoxy, perfluoroalkyle, nitro, cyano, carboxyle, sulfonyle, incluant les esters ou amides de carboxyle ou sulfonyle et leurs sels. Lorsque ledit milieu est un milieu pour détecter une seule variation de pH , YI est H ou un alkyl Lorsque ledit milieu est un milieu pour détecter une activité peptidase, et facultativement d'une variation de pH, YI est un peptide. Préférentiellement U ou V est N Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, YI est un peptide, préférentiellement choisi parmi l'alanine, l'asparagine, la glutamine, le tyrosine Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, n = 1 Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, W1, W2, W3 et W4 sont indépendamment H Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, U est CH et V est N ou N+R, préférentiellement N+CH3 Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, V est CH et U est N ou N+R, préférentiellement N+CH3 Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, Z1, Z2, Z3 et Z4, Z5, et Z6 sont indépendamment H Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, L-Alanyl-4-(4'-amidophenyl)-2-méthyl-quinoline, L-Alanyl-4-(4'-amidostyryl)-N-benzyl-quinolinium TFA, L- Glutamyl-4-(4'-amidostyryl)-N-benzyl-quinolinium TFA, beta-Alanyl-4-(4'- amidostyryl)-N-benzyl-quinolinium TFA, L-Alanyl-4-(4'-amidostyryl)-N-methylquinolinium TFA, D-Alanine-N-méthyl-4-(4'-aminostyryl)-quinolinium (dichlorure), L-Alanyl-2-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium, Z-Alanyl-2-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium, L-Alanyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium (dichlorure), L-Alanyl-L-alanyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium (dichlorure), L-Alanyl-L- alanyl-L-alanyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium (dichlorure), y- Aminobutyryl-4-(4'-amidostyryl)-N-methylquinolinium di-Cl, L-Asparaginyl-4-(4'- amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium-bis-TFA, a-Aspartyl-4-(4'-amidostyryl)-N-methylquinolinium dichloride, (3-Aspartyl-4-(4'-amidostyryl)-N-methylquinolinium dichloride, Glycyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium (dichlorure), L-gamma- Glutamyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium (dichlorure), Glycyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium chloride, L-Leucyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthylquinolinium dihydrochloride, L-Methionyl-4-(4'-amidostyryl)-N-methyl-quinolinium di-Cl, Pyroglutamyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium iodide, Sarcosinyl-4-(4'-amidostyryl)-N-methyl-quinolinium dichloride, L-Tryptophanyl-4-(4-amidostyryl)-N- méthyl-quinolinium dihydrochloride, L-Tyrosyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthylquinolinium dihydrochloride, beta-Alanyl-2-(4'-amidostyryl)-N-methyl-quinolinium TFA, L-Prolyl-2-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium (HBr), Z-Arginyl-2-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium, L-Pyroglutamyl -2-(4'-amidostyryl)-N-méthylquinolinium, L-Alanyl-4-(4'-amidostyryl)quinoline TFA, 13-Alanyl-4-(4'-amidostyryl)- quinoline, L-Glutamyl-4-(4'-amidostyryl)quinoline TFA, Glycyl-4-(4'- amidostyryl)quinoline TFA, Pyroglutamyl-4-(4'-amidostyryl) quinoline, L-Alanyl-2- (4'-amidostyryl)-quinoline, 13-Alanyl-2-(4'-amidostyryl)-quinoline, Glycyl-2-(4'- amidostyryl)quinoline TFA, L-Alanyl-2-(2'-pyridyl)-4-(4"-amidostyryl)-quinoline Selon un mode préféré de réalisation de l'invention, ledit composé est choisi parmi : 13-Alanyl-2-(4'-amidostyryl)-quinoline 03-Ala-ASQ), L-Tyrosyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium dihydrochloride (Tyr-ASQM+), L-Asparaginyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium-bis-TFA (Asn-ASQM+), L-gamma-Glutamyl- 4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium (dichlorure) (y-Glu-ASQM+), L-Alanyl-L-alanyl-L-alanyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium (dichlorure) (Tri-Ala-ASQM+) Préférentiellement, le microorganismes est choisi parmi Escherichia coli, Serratia marcescens, Enterobacter cloacae, Salmonella typhimurium, Providencia rettgeri, Yersinia enterocolitica, Pseudomonas aeruginosa, Bacillus subtilis, Listeria monocytogenes, Staphylococcus aureus, Streptococcus pyogenes, Enterococcus faecalis. Préférentiellement, ledit milieu réactionnel est un milieu de détection et/ou d'identification de microorganismes, ledit milieu comprenant au moins une molécule utilisée à titre de substrat enzymatique ou d'indicateur de pH telle que définie ci avant. Préférentiellement, ledit composé, substrat enzymatique ou indicateur de pH, est à une concentration comprise entre 1 et 1000 mg/l, préférentiellement entre 10 et 500 mg/1. Selon un mode particulier de réalisation de l'invention, ledit milieu de détection et/ou d'identification selon l'invention comprend en outre au moins un autre substrat enzymatique, spécifique d'une activité enzymatique différente de l'activité peptidase détectée par la molécule selon l'invention. Selon un autre mode particulier de réalisation de l'invention, ledit milieu de détection et/ou d'identification selon l'invention comprend en outre au moins un substrat spécifique d'une activité enzymatique différente de celle mise en évidence par la variation de pH. Le métabolisme enzymatique du ou des autres substrats génère un signal détectable, différent du signal généré par le composé selon l'invention utilisé à titre de substrat enzymatique ou d'indicateur de pH, comme par exemple des produits colorés ou fluorescents différents, pour permettre la mise en évidence comme la détection et/ou l'identification et/ou la quantification d'un ou plusieurs microorganismes. A titre d'autre substrat spécifique, on peut utiliser tout autre substrat classiquement utilisé dans la détection des microorganismes. La concentration de l'autre substrat enzymatique spécifique est généralement comprise entre 0,01 et 1 g/1. L'homme du métier pourra déterminer facilement une telle concentration en fonction du substrat utilisé. A titre indicatif, il est possible de combiner les composés selon l'invention avec des substrats enzymatiques de peptidase, d'osidase, d'estérase ou de réductase. En particulier, il est possible d'associer un substrat selon l'invention pour lequel le peptide est une B-Alanine avec un substrat d'osidase, tel que le 5-Bromo-4-chloro-3-indolyl-13-glucoside, ou l'Alizarine-B-galactoside. Il est également possible d'associer un substrat selon l'invention pour lequel le peptide est la L-Alanine avec un substrat d'estérase, tel que le 5-Bromo-6-chloro-3-indoxyl-octanoate ou le 5-Bromo-3-indoxyl-phosphate. Selon un mode particulier de réalisation de l'invention, ledit milieu de détection et/ou d'identification selon l'invention comprend en outre au moins un autre substrat enzymatique spécifique de l'activité peptidase ou spécifique de l'activité enzymatique détectée par un composé selon l'invention utilisé à titre d'indicateur de pH. Par le choix particulier de substrats, il est alors possible d'identifier des groupes de microorganismes exprimant une même activité enzymatique. La concentration de l'autre substrat enzymatique spécifique est généralement comprise entre 0,01 et 1 g/1. L'homme du métier pourra déterminer facilement une telle concentration en fonction du substrat utilisé. En particulier, il est possible d'associer un substrat selon l'invention pour lequel le peptide est une L-Alanine avec un substrat de L-Alanine aminopeptidase décrit dans la demande WO2006030119, tel que la L-Alanine-pentyl-résorufamine. Selon un mode particulier de réalisation de l'invention, ledit milieu de détection et/ou d'identification selon l'invention comprend en outre au moins un indicateur métabolique, spécifique d'une activité métabolique différente de celle détectée par le composé selon l'invention utilisé à titre de substrat ou d'indicateur de pH. Cet indicateur métabolique peut notamment être une source de Carbone ou d'Azote associée ou non à un réactif révélant son métabolisme. Selon un mode particulier, la source de Carbone ou d'Azote est associée à un indicateur de pH différent du composé selon l'invention utilisé à ce titre. Selon un autre mode particulier, la source de Carbone ou d'Azote est associée à un cation. Selon un autre mode particulier l'indicateur métabolique permet de détecter une activité tryptophanase et associe du Tryptophane et un réactif permettant de détecter la production d'Indole. Les exemples ci après sont donnés a titre illustratif. Exemple 1 - Synthèse de substrats La 4-(4'-Aminostyryl)-quinoléine était préparé suivant la méthode de Bahner et al (C. T. Bahner, C. Cook, J. Dale, J. Fain, F. Hannan, P. Smith and J. Wilson, Journal of Organic Chemistry, 1958, 23, 1060-1062). L'aminoacylation de la 4-(4'-aminostyryl)-quinoléine avec de la t-BOC-13-alanine est donnée à titre d'exemple et les autres aminoacylations étaient effectuées de la même façon avec un autre acide aminé protégé. Synthèse de la t-BOC-f3-alanine-4-(4'-aminostyryl)-quinoléine à partir de la 4-(4'-aminostyryl)-quinoléine et de la t-BOC-(3-alanine suivant la méthode des anhydrides mixés : On s'est assuré que toute la verrerie utilisée était bien sèche avant toute chose car la présence d'humidité aurait pu empêcher la réaction de se dérouler correctement. On a dissous 0,50g (0,00266 mol) de t-Boc-L-alanine dans 10ml de tétrahydrofuranne (THF) sec et ajouté un piège de CaC12 sur le col du ballon afin d'assurer l'étanchéité. On a agité magnétiquement et fait descendre la température du milieu réactionnel à -15°C en utilisant un bain de glace congelée mélangée à des sels de NaCl. Une fois cette température atteinte, on a laissé agiter 5 minutes de plus. Puis on a ajouté 0,34g (0,0033 mol) de N-Méthylmorpholine tout en prenant bien soin que la température redescende à -15 °C avant de procéder à la prochaine étape. Ensuite on a ajouté goutte à goutte avec la plus grande précaution 0,36g (0,00266 mol) d'Isochlorobutylformate, le milieu réactionnel s'est troublé comme prévu à chaque goutte ajoutée. Quelques minutes plus tard on a dissous 0,49g (0,002 mol) de 4-(4'-aminostyryl)-quinoléine dans le minimum de THF sec et on l'a ajouté au milieu réactionnel. On a retiré le bain de glace après 2 heures et laissé agiter durant la nuit. On a filtré la solution, rincé le ballon avec du THF normal et conservé le filtrat. Un léger précipité fut présent on est donc passé à la prochaine étape, autrement on aurait du remettre la solution dans un ballon propre et évaporer la quantité adéquate de solvant. On a transféré la solution à l'aide d'une pipette pasteur dans un bécher de 400 ml contenant de la glace, de l'eau ainsi que du carbonate de sodium (Na2CO3). On a laissé le tout agiter durant une paire d'heure, jusqu'à obtenir une solution limpide. On a filtré la solution dans un petit Buchner puis dissous le précipité dans de l'éthanol afin de le recristalliser. On a ainsi obtenu 0,76g de t-BOC-13-alanine-4-(4'-aminostyryl)-quinoléine, un solide jaune avec un rendement de 90%, m.p. 160-162 °C. HRMS (EI) pour C25H25N3O3. Masse théorique de l'ion moléculaire 418,2125 (M+H)+. Masse trouvée: 418,2123. 1H-NMR: (DMSO) 8 1.34 (9H, s, C(CH3)3), 3.19 (2H, q, J=5.94 Hz, >CH2), 3.38 (2H, m, >CH2), 6.88 (1H, t, J=5.69 Hz, NH), 7.50 (1H, d, J=16.08 Hz, =CH), 7.61 (1H, m, Ph-H), 7.64 (2H, d, J=8.66 Hz, C6'-H and C2'-H), 7.73 (1H, m, Ph-H), 7.74 (2H, d, J=8.91 Hz, C5'-H and C3'-H), 7.79 (1H, d, J=4.70 Hz, C3-H), 7.96 (1H, d, J=6.33 Hz, =CH), 7.99 (1H, d, J=8.16 Hz, C5-H), 8.48 (1H, d, J=8.41 Hz, C8-H), 8.82 (1H, d, J=4.70 Hz, C2-11), 10.09 (1H, s, NH). IR: �max cm -1 3380 (CO), 3307 (CONH), 1693 (CONH), 1673 (CONH), 1365 (C(CH3)3), 754 (CH2). La déprotection des composés t-BOC-acide aminé était accomplie soit par réaction avec de l'HCl (donnant un sel d'acide chlorhydrique) soit par réaction avec de l'acide TFA (donnant un sel d'acide trifluoroacétique). La déprotection de la t-BOC-(3-alanine- 4-(4'-aminostyryl)-quinoléine avec de l'HCl est donnée à titre d'exemple et les autres déprotections étaient effectuées de la même façon. Pour la déprotection avec TFA, on a placé du composé à déprotéger dans un ballon équipé d'un piège à CaC12. Puis on a ajouté de l'acide trifluoroacétique et laissé le mélange sous agitation magnétique toute la nuit. On a évaporé le TFA afin d'obtenir le produit sous forme de sel d'acide trifluoroacétique. Synthèse de la (3-Alanine-4-(4'-aminostyryl)-quinoléine à partir de la t-BOC-(3-alanine-4-(4'-aminostyryl)-quinoléine : On a dissout de la t-BOC-13-alanine-4-(4'-aminostyryl)-quinoléine dans le minimum d'acétate d'éthyle dans un ballon équipé d'un piège à CaC12. Puis, on a ajouté une solution saturée d'HCl dans de l'acétate d'éthyle. On a laissé agiter le mélange pendant la nuit et ensuite on a évaporé le solvant. On a ainsi obtenu de la (3-Alanine 4-(4'-aminostyryl)-quinoléine dichlorique, un solide marron avec un rendement de 77%, m.p. 176-178 °C. HRMS (EI) for C20H19N3O. Masse théorique de l'ion moléculaire 318,1601 (M+H)+. Masse trouvée: 318,1601. 1H-NMR: (DMSO) 8 2.50 (2H, t, J=6.19 Hz, >CH2), 3.15 (2H, m, >CH2), 7.27 (1 H, d, J=2.72 Hz, Ph-H), 7.30 (1H, d, J=16.08 Hz, =CH), 7.57 (2H, d, J=8.41 Hz, Ph-H), 7.63 (1H, d, J=16.08 Hz, - CH), 7.64 (2H, d, J=8.91 Hz, Ph-H), 7.74 (2H, m, Ph-H), 8.12 (1H, d, J=8.66 Hz, Ph- H), 8.23 (1H, d, J=7.42 Hz, C8-11), 8.88 (1H, d, J=4.45 Hz, C2-H), 10.43 (1H, s, NH). IR: u,nax cm -1 2852 (NH sait), 1.674 (C=O), 1584 (NH), 1379 (NH). L'alkylation des composés t-BOC-acide aminé était effectuée par réaction avec un alkyle halogéné. Les sels que l'on a ainsi obtenus étaient déprotégés soit avec de l'HCl soit avec de l'acide TFA comme mentionné ci-dessus. La méthylation et la déprotection de la t-BOC-(3-alanine-4-(4'-aminostyryl)-quinoléine avec de l'iodure de méthyle est donnée à titre d'exemple. Synthèse de la (3-Alanine-N-méthyl-4-(4'-aminostyryl)-quinoléinium dichlorée à partir de la t-BOC-13-alanine-4-(4'-aminostyryl)-quinoléine : On a agité un mélange de 0,42g (0,001 mols) de la t-Boc-(3-alanyl-4-(4'-aminostyryl)-quinoléine et de 2,21g (0,0155 mols) d'iodure de méthyle dans 10 ml d'acétonitrile pendant la nuit. On a filtré le mélange donnant 0,38g d'un solide orange de t-Boc-13-alanyl-N-méthyl-4-(4'-aminostyryl)-quinoléinium iodé avec un rendement de 70%, 180-182 °C. HRMS (EI) for C26H29N3O3. Masse théorique de l'ion moléculaire 432,2282 (M+H)+. Masse trouvée: 432,2280. 'H-NMR: (DMSO) 8 1.39 (9H, s, - C(CH3)3), 3.24 (2H, quartet, J= 6.19 Hz, >CH2), 3.37 (2H, m, >CH2), 4.54 (3H, s, - CH3), 6.95 (1H, t, J=6.19 Hz, NH), 7.75 (2H, d, J=8.66 Hz, C6'-H and C2'-11), 7.96 (2H, d, J=8.66 Hz, C5'-H and C3'-H), 8.05 (1H, t, J=7.42 Hz, C7-H), 8.08 (1H, d, J=16.08 Hz, =CH), 8.24 (1H, d, J=16.08 Hz, =CH), 8.27 (1H, t, J=6.93 Hz, C6-H), 8.44 (1H, d, J=8.91 Hz, C5-H), 8.48 (1H, d, J=6.68 Hz, C3-H), 9.05 (1H, d, J=8.66 Hz, C8-H), 9.32 (1H, d, J=6.68 Hz, C2-H), 10.26 (1H, s, NH). IR: un cm-' 3368 (NH), 3276 (NH), 1674 (CO), 1617 (CO), 1592 (CONH), 1571 (CONH), 1365 (CCH3)3), 1395 (CH3). On a déprotégé 0,54g (0,0013 mols) de ce composé avec de l'HCl donnant 0,39g d'un solide marron de (3-Alanine-N-méthyl-4-(4'-aminostyryl)-quinoléinium dichlorée avec un rendement de 77%, m.p. 176-178 °C. HRMS (EI) for C20H19N3O. Masse théorique de l'ion moléculaire 318,1601 (M+H)+. Masse trouvée: 318,1601. 'H-NMR: (DMSO) 8 2.50 (2H, t, J=6.19 Hz, >CH2), 3.15 (2H, m, >CH2), 7.27 (1H, d, J=2.72 Hz, Ph-H), 7.30 (1H, d, J=16.08 Hz, =CH), 7.57 (2H, d, J=8.41 Hz, Ph-H), 7.63 (1H, d, J=16.08 Hz, -CH), 7.64 (2H, d, J=8.91 Hz, Ph-H), 7.74 (2H, m, Ph-H), 8.12 (1H, d, J=8.66 Hz, Ph-H), 8.23 (1H, d, J=7.42 Hz, C8-H), 8.88 (1H, d, J=4.45 Hz, C2-H), 10.43 (1H, s, NH). IR: vmax cni 1 2852 (NH sait), 1674 ( C=O), 1584 (NH), 1379 (NH). Autre exemples de substrats typiques obtenus d'une façon similaire à celle mentionné ci-dessus : L-Alanine-N-méthyl-4-(4'-aminostyryl)-quinoléinium dichlorée, un solide rouge, m.p. 244-246 °C. HRMS(EI) for C21H23N3O. Masse théorique de l'ion moléculaire 332,1757 (M-2HC1+H)+. Masse trouvée: 332,1756. 1H-NMR: (DMSO) S 1.51 (3H, d, J=6.93 Hz, -CH3), 4.19 (1H, q, J=6.93 Hz, ala-H), 4.55 (3H, s, -CH3), 7.86 (2H, d, J=8.66 Hz, C6'-H and C2'-H), 8.01 (2H, d, J=8.66 Hz, C5'-H and C3'-H), 8.05 (1H, m, Ph-H), 8.28 (1H, m, Ph-H), 8.16 (1H, d, J=16.08 Hz, =CH), 8.29 (1H, d, J=16.08 Hz, =CH), 8.44 (1H, d, J=8.91 Hz, C5-H), 8.51 (1H, d, J=6.68 Hz, C3-H), 9.06 (1H, d, J=8.41 Hz, C8-H), 9.40 (1H, d, J=6.68 Hz, C2-H), 11.49 (1H, s, NI]). IR: vmax cm 'l 1693 (C=O), 1597 (NH), 1533 (NH), 1324 (NH), 1369 (CH3). L-gamma-Glutamyl-N-méthyl-4-(4'-aminostyryl)-quinoléinium dichlorée. 1H-NMR: (DMSO) S 2.05 (2H, m, >CH2), 2.55 (2H, m, >CH2), 3.87 (1H, m, >CH-), 4.49 (3H, s, N-CH3), 7.70 (2H, d, J=7 Hz, Ar-H), 7.90 (2H, d, J=7 Hz, Ar-H), 7.90-8.50 (6H, m, Ar-H, -CH=), 8.60 (1H, broad s, >NH), 8.97 (1H, d, J=8 Hz, Ar-H), 9.29 (1H, d, J=5 Hz, Ar-H). L-Tyrosyl-N-méthyl-4-(4'-aminostyryl)-quinoléinium dichlorée. 1H-NMR: (DMSO) S 3.10 (2H, m, >CH2), 4.30 (1H, m, >CH-), 4.52 (3H, s, N-CH3), 6.70 (2H, d, J=7 Hz, Ar-H), 7.12 (2H, d, J=7 Hz, Ar-H), 7.79 (2H, d, J=7 Hz, Ar-H), 7.98 (2H, d, J=7Hz, Ar-H), 8.00-8.60 (6H, m, Ar-H and ûCH=), 9.04 (1H, d, J=7 Hz, Ar-H), 9.38 (1H, d, J=5 Hz, Ar-H), 9.46 (1H, broad s, >OH). L-Alanine-N-méthyl-4-(4'-aminostyryl)-quinoléinium dichlorée et D-Alanine-N-méthyl-4-(4'-aminostyryl)-quinoléinium dichlorée. 1H-NMR: (DMSO) S 1.51 (3H, d, J=6.93 Hz, -CH3), 4.19 (1H, q, J=6.93 Hz, ala-H), 4.55 (3H, s, -CH3), 7.86 (2H, d, J=8.66 Hz, C6'-H and C2'-H), 8.01 (2H, d, J=8.66 Hz, C5'-H and C3'-H), 8.05 (1H, m, Ph-H), 8.28 (1H, m, Ph-H), 8.16 (1H, d, J=16.08 Hz, =CH), 8.29 (1H, d, J=16.08 Hz, =CH), 8.44 (1H, d, J=8.91 Hz, C5-H), 8.51 (1H, d, J=6.68 Hz, C3-H), 9.06 (1H, d, J=8.41 Hz, C8-H), 9.40 (1H, d, J=6.68 Hz, C2-H), 11.49 (1H, s, NH). Exemple 2 ù Utilisation de substrats de formule I selon l'invention pour détecter une activité peptidase a) Substrats de peptidase Les composés 13-Alanyl-2-(4'-amidostyryl)-quinoline ((3-Ala-ASQ), L-Tyrosyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium dihydrochloride (Tyr-ASQM+), L-Asparaginyl- 4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium-bis-TFA (Asn-ASQM% L-gamma- Glutamyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium (dichlorure) (y-Glu-ASQM+), L-Alanyl-L-alanyl-L-alanyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium (dichlorure) (Tri-Ala-ASQM+), ont été synthétisés comme décrit à l'exemple 1 b) Préparation du milieu 40mg de chacun des substrats ont été dissouts dans 4ml de Diméthylsulfoxide (80mg pour le Asn-ASQM+) et ajouté à 400m1 de milieu Columbia préalablement autoclavé. Les 6 milieux ont été répartis en boîte de Petri de 90mm de diamètre à raison de 20m1 par boîte. c) Ensemencement et incubation Dix-sept souches de micro-organismes issues de collections et appartenant à différentes espèces de bactéries et levures sont ensemencées en spot d'environ 10 000 unités formant colonies. Dix microlitres d'un mélange à parts égales de suspensions à 0,5 McFarland diluées au 20e des souches Escherichia coli NCTC 10 418 et Yersinia enterocolitica NCTC 11 176 sont ensemencés sur le milieu par isolement en quadrants. Les milieux sont incubés 24 heures à 37°C, puis les colonies formées sont examinées visuellement, avec ou sans ajout d'acide, et sous lampe UV à 365nm. d) Lecture des résultats Les résultats obtenus sont présentés dans le tableau 1 ci après 24 Espèce Tyr-ASQM+ Tri-Ala-ASQM+ 7-Glu-ASQM4 Asn-ASQM+ Crois. (3-Ala-ASQ Coul. post acid. Numéro de collection Fluo. Coul. Crois. Coul. Crois. Coul. Crois. Coul. Crois. Coul. Escherichia coli 2 Orange 2 Orange 2 Orange 2 Orange 2 Bleu pâle Jaune Pâle NCTC 10 418 pâle Serratia marcescens 2 Orange 2 Orange 2 Orange 2 Orange 2 Vert Orange NCTC 10 211 pâle Pseudomonas 2 2 Orange 2 Orange 2 Orange 2 Vert Orange aeruginosa pâle NCTC 10 662 Yersinia enterocolitica 2 Orange 2 Orange 2 2 2 Bleu pâle Jaune Pâle NCTC 11 176 pâle pâle Salmonella 2 Orange 2 Orange 2 Orange 2 2 Bleu pâle Jaune Pâle typhimurium pâle NCTC 74 Enterobacter cloacae 2 Orange 2 Orange 2 Orange 2 Orange 2 Bleu pâle Jaune Pâle NCTC 11 936 pâle Providencia rettgeri 2 Orange 2 Orange 2 Orange 2 2 Bleu pâle Jaune Pâle NCTC 7 475 pâle pâle Bacillus subtilis 1 2 1 2 Orange PdC NCTC 9 372 Enterococcus faecalis 1 Orange 2 Orange 1 2 PdC NCTC 775 pâle pâle Enterococcus faecium 1 2 1 2 PdC NCTC 7 171 Staphylococcus 0,5 2 1 PdC epidermidis NCTC 11 047 Staphylococcus aureus PdC 2 1 0,5 PdC NCTC 6 571 25 Espèce Tyr-ASQM+ Tri-AIa-ASQM+ y-Glu-ASQM+ Asn-ASQM+ (3-Ala-ASQ Numéro de collection Crois. Coul. Crois. Coul. Crois. Fluo. Coul. Coul. post acid. Crois. Coul. Crois. Coul. Staphylococcus aureus PdC - 2 1 - 2 Orange PdC - - - NCTC 11 939 Streptococcus pyogenes Orange NCTC 8 306 PdC - 2 pâle 1 - - - PdC - - - Listeria monocytogenes 1 - 2 1 - 2 - PdC - - - NCTC 11 994 Candida albicans 0,5 - 2 1 - 2 - PdC - - - ATCC 90 028 Candida glabrata PdC .. 2 1 - 0,5 - PdC - - - NCPF 3 943 PdC : pas de croissance, 0,5 : croissance faible, 1 : croissance modérée, 2 : bonne croissance, - : pas de couleur Sur la boîte ensemencée avec le mélange de 2 souches (E. coli et Y. enterocolitica), deux types de colonies se développent : des colonies orange de la souche d'E. coli et des colonies incolores de la souches d'Y. enterocolitica. e) Conclusions Sur les milieux selon l'invention, il est possible de détecter des activités peptidase de micro-organismes grâce à la fluorescence ou à la coloration des colonies. Avec certains substrats selon l'invention, la coloration des colonies apparaît en condition acide, comme c'est le cas avec le 13-Ala-ASQ dans cet exemple. Avec les autres substrats de cet exemple, l'étape d'acidification n'est pas requise. Le plus souvent les substrats selon l'invention permettent la croissance de tout type de microorganismes : bactéries à Gram négatif, bactéries à Gram positif, levures, ..., mais certains peuvent être toxiques vis-à-vis de certains groupes, comme c'est le cas du (3-Ala-ASQ dans cet exemple. Par les différentes variations de structure des substrats de peptidase selon l'invention, il est possible de distinguer différents groupes de microorganismes. De plus, la coloration ne diffusant pas dans le milieu réactionnel, il est possible de distinguer et de compter les cellules ou colonies exprimant l'activité peptidase de celles ne l'exprimant pas. REVENDICATIONS1. Utilisation d'un composé de la formule (I) suivante, comme substrat enzymatique pour la 5 détection d'une activité peptidase et/ou une variation de pH : selon laquelle : • Y1 est un peptide, H ou un alkyl 10 • Wl, W2, W3 et W4 sont indépendamment H, Br, Cl, F, I, alkyle, alkoxy, thiométhyle, perfluoroalkyle, nitro, cyano, carboxyle (incluant ses esters ou amides) ou toute combinaison de ceux-ci • n=O, l ou2 • U est N ou N+R et V est CZ6 N ou N+R ou bien V est N ou N+R et U est CZ6, 15 • R est H, alkyle, aralkyle, aryle, alcanoïque ou alkylsulfonique • Z1, Z2, Z3, Z4 et Z5, sont indépendamment H, Br, Cl, F, I, alkyle, aryle, alkoxy, perfluoroalkyle, nitro, cyano, carboxyle, sulfonyle, incluant les esters ou amides de carboxyle ou sulfonyle et leurs sels 20 2. Utilisation d'un composé de formule I selon la revendication 1 selon laquelle YI est un peptide, préférentiellement choisi parmi l'alanine, l'asparagine, la glutamine, le tyrosine 3. Utilisation d'un composé de formule I selon la revendication 1 ou 2 selon laquelle n = 1 (I) 4. Utilisation d'un composé de formule I selon l'une quelconque des revendications 1 à 3 selon laquelle W1, W2, W3 et W4 sont indépendamment H 5. Utilisation d'un composé de formule I selon l'une quelconque des revendications 1 à 4 selon laquelle U est CH et V est N ou N+R, préférentiellement N+CH3 6. Utilisation d'un composé de formule I selon l'une quelconque des revendications 1 à 4 selon laquelle V est CH et U est N ou N+R, préférentiellement N+CH3 7. Utilisation d'un composé de formule I selon l'une quelconque des revendications 1 à 6 selon laquelle Z1, Z2, Z3 et Z4 sont indépendamment H 8. Utilisation d'un composé de formule I selon la revendication 1 selon laquelle ledit 15 composé est choisi parmi : L-Alanyl-4-(4'-amidophenyl)-2-méthyl-quinoline, L-Alanyl-4-(4'- amidostyryl)-N-benzyl-quinolinium TFA, L-Glutamyl-4-(4'-amidostyryl)-N-benzyl- quinolinium TFA, beta-Alanyl-4-(4'-amidostyryl)-N-benzyl-quinolinium TFA, L-Alanyl-4- (4'-amidostyryl)-N-methyl-quinolinium TFA, D-Alanine-N-méthyl-4-(4'-aminostyryl)- quinolinium (dichlorure), L-Alanyl-2-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium, Z-Alanyl-2- 20 (4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium, L-Alanyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium (dichlorure), L-Alanyl-L-alanyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium (dichlorure), L- Alanyl-L-alanyl-L-alanyl-4-(4' -amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium (dichlorure), y- Aminobutyryl-4-(4'-amidostyryl)-N-methylquinolinium di-Cl, L-Asparaginyl-4-(4'- amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium-bis-TFA, a-Aspartyl-4-(4'-amidostyryl)-N- 25 methylquinolinium dichloride, (3-Aspartyl-4-(4'-amidostyryl)-N-methylquinolinium dichloride, Glycyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium (dichlorure), L-gamma-Glutamyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium (dichlorure), Glycyl-4-(4'-amidostyryl)- N-méthyl-quinolinium chloride, L-Leucyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium dihydrochloride, L-Methionyl-4-(4'-amidostyryl)-N-methyl-quinolinium di-Cl, 30 Pyroglutamyl-4-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium iodide, L-Tryptophanyl-4-(4- amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium dihydrochloride, L-Tyrosyl-4-(4'-amidostyryl)-N- méthyl-quinolinium dihydrochloride, beta-Alanyl-2-(4'-amidostyryl)-N-methyl-quinolinium TFA, L-Prolyl-2-(4'-amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium (HBr), Z-Arginyl-2-(4'- lo amidostyryl)-N-méthyl-quinolinium, L-Pyroglutamyl -2-(4'-amidostyryl)-N-méthylquinolinium, L-Alanyl-4-(4'-amidostyryl)quinoline TFA, 13-Alanyl-4-(4'-amidostyryl)-quinoline, L-Glutamyl-4-(4'-amidostyryl)quinoline TFA, Glycyl-4-(4'-amidostyryl)quinoline TFA, Pyroglutamyl-4-(4'-amidostyryl) quinoline, L-Alanyl-2-(4'-amidostyryl)-quinoline, B- Alanyl-2-(4'-amidostyryl)-quinoline, Glycyl-2-(4'-amidostyryl)quinoline TFA, L-Alanyl-2- (2'-pyridyl)-4-(4"-amidostyryl)-quinoline 9. Procédé pour la détection chez des micro-organismes d'une activité peptidase et/ou d'une variation de pH, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes : a) Disposer d'un milieu de détection et/ou d'identification comprenant composé de la formule (I) suivante : W3 W4 selon laquelle : • Yl est un peptide, H ou un alkyl • Wi, W2, W3 et W4 sont indépendamment H, Br, Cl, F, 1, alkyle, alkoxy, thiométhyle, perfluoroalkyle, nitro, cyano, carboxyle (incluant ses esters ou amides) ou toute combinaison de ceux-ci • n=0, 1 ou2 • U est N ou N+R et V est CZ6 N ou N+R ou bien V est N ou N+R et U est CZ6, 20 • R est H, alkyle, aralkyle, aryle, alcanoïque ou alkylsulfonique • Z1, Z2, Z3, Z4 et Z5, sont indépendamment H, Br, Cl, F, I, alkyle, aryle, alkoxy, perfluoroalkyle, nitro, cyano, carboxyle, sulfonyle, incluant les esters ou amides de carboxyle ou sulfonyle et leurs sels. (1) b) ensemencer le milieu avec un échantillon biologique à tester, c) laisser incuber, et d) révéler la présence d'au moins une activité peptidase ou une variation de pH 10. Procédé pour la différenciation chez des bactéries de leur appartenance aux bactéries à Gram positif ou aux bactéries à Gram négatif, caractérisé en ce qu'il comprend par les étapes suivantes : a) disposer d'un milieu de détection et/ou d'identification comprenant composé de la formule (I) suivante : 1,1 (1) selon laquelle : • Yl est un peptide, H ou un alkyl • Wb W2, W3 et W4 sont indépendamment H, Br, Cl, F, I, alkyle, alkoxy, thiométhyle, perfluoroalkyle, nitro, cyano, carboxyle (incluant ses esters ou 15 amides) ou toute combinaison de ceux-ci • n=0,lou2 • U est N ou N+R et V est CZ6 N ou N+R ou bien V est N ou N+R et U est CZ6, • R est H, alkyle, aralkyle, aryle, alcanoïque ou alkylsulfonique • Z1, Z2, Z3, Z4 et Z5, sont indépendamment H, Br, Cl, F, I, alkyle, aryle, alkoxy, 20 perfluoroalkyle, nitro, cyano, carboxyle, sulfonyle, incluant les esters ou amides de carboxyle ou sulfonyle et leurs sels. b) ensemencer le milieu avec un échantillon biologique à tester, c) laisser incuber, et d) révéler la présence d'au moins une activité peptidase 11. Milieu de détection et/ou d'identification de microorganismes comprenant un composé de la formule (I) suivante pour détecter une activité peptidase et/ou une variation de pH : w3 W4 Y,1 (1) selon laquelle : • Y1 est un peptide, H ou un alkyl • W1, W2, W3 et W4 sont indépendamment H, Br, Cl, F, 1, alkyle, alkoxy, thiométhyle, perfluoroalkyle, nitro, cyano, carboxyle (incluant ses esters ou 10 amides) ou toute combinaison de ceux-ci • n=0, 1 ou2 • U est N ou N+R et V est CZ6 N ou N+R ou bien V est N ou N+R et U est CZ6, • R est H, alkyle, aralkyle, aryle, alcanoïque ou alkylsulfonique • Z1, Z2, Z3, Z4 et Z5, sont indépendamment H, Br, Cl, F, I, alkyle, aryle, alkoxy, 15 perfluoroalkyle, nitro, cyano, carboxyle, sulfonyle, incluant les esters ou amides de carboxyle ou sulfonyle et leurs sels.