Brevet FR2954352A1 — publié le 20110624

La présente demande se rapporte au domaine médical, et plus particulièrement à celui de la détermination d'une prédisposition à développer un cancer. Dans environ 5% des cancers, des mutations germinales activant des oncogènes ou inactivant des gènes suppresseurs de tumeurs (dits gènes majeurs ou à effet fort), confèrent aux porteurs un risque élevé (supérieur à 50% au cours de la vie) de développer un cancer, à l'origine de formes familiales, du sujet jeune ou d'atteintes multiples. L'expression de la maladie peut varier sous l'influence d'autres facteurs génétiques (dits modificateurs, gènes à effets faibles) ou environnementaux. L'identification des personnes à risque permet de leur faire bénéficier de mesures de prévention et de surveillance visant un dépistage précoce. Le mélanome est une tumeur maligne des mélanocytes. C'est un des cancers de la peau les plus rares mais il est cause de la majorité des décès dus au cancer de la peau. Malgré de nombreuses années de recherche intensive, le seul traitement efficace est la résection chirurgicale de la tumeur primaire avant qu'elle n'atteigne une épaisseur de plus d'l mm. Selon un rapport de l'OMS, il y a environ 48 000 décès liés aux mélanomes par an. Dans plusieurs études, une augmentation du risque de développer un cancer du sein, un lymphome ou un cancer du rein chez les patients ayant des mélanomes cutanés a été discutée. Concernant le mélanome, deux gènes à effet fort ont été identifiés à ce jour, CDKN2A codant les protéines p16INx4A et pl4ARF, et CDK4. Le facteur environnemental majeur est l'exposition aux UV. Les gènes à effets faibles connus sont principalement des gènes codants des protéines impliquées dans la pigmentation, MCIR étant le plus étudié à ce jour. 50% des familles à trois cas de mélanome n'ont pas de gène de prédisposition identifié. Dans ce contexte, les inventeurs ont étudié le gène MITF, gène majeur de régulation du mélanocyte (1) et oncogène (2,3) comme gène candidat de prédisposition au mélanome. MITF est un facteur de transcription de la famille bHLH-LZ qui joue un rôle majeur dans la survie et le développement des mélanocytes. MITF est impliqué dans la régulation de la mélanogenèse. Le rôle de MITF est inhabituel puisqu'il est à la fois inducteur et répresseur de la prolifération cellulaire. En effet, ce facteur est nécessaire d'une part pour la différentiation terminale des mélanocytes et/ou la pigmentation, et d'autre part pour le comportement malin en induisant la prolifération cellulaire. Des mutations de MITF ont été associées à des maladies autosomales dominantes, notamment le Syndrome de Waardenburg et le Syndrome de Tietz, se caractérisant par une surdité avec des anomalies de la pigmentation de la peau, des cheveux et/ou de l'iris. Le gène MITF comprend 9 exons. Six isoformes de MITF ont été identifiées. Chez l'Homme, on les définit généralement comme les isoformes 1 à 6, l'isoforme 4 étant plus connue sous le nom d'isoforme M. Chez la souris, on utilise plutôt la nomenclature avec des lettres. Ces isoformes sont transcrites par des promoteurs spécifiques. De plus, elles se distinguent par leur région N-terminale et contiennent toutes les exons 2 à 9, l'exon 1 étant spécifique de chaque isoforme (1). L'isoforme 4, plus communément appelé MITF-M, se différencie des autres isoformes par une insertion de six acides aminés. Cette iso forme a été détectée uniquement dans des mélanocytes ou des cellules transformées in vivo (nevus, mélanome, etc) ou dérivées in vitro (lignées). Les autres iso formes sont exprimées dans beaucoup de tissus et de lignées cellulaires, parfois aussi avec des spécificités tissulaires. WO 00/47765 enseigne que l'épissage alternative du gène MITF produit des transcrits mitf+ et mitf- codant pour des protéines différant par l'insertion de six acides aminés supplémentaires dans mitf+. L'expression de mitf+ et mitf- prédomine respectivement dans les cellules saines et tumorales. Cette demande de brevet divulgue donc une méthode semi-quantitative pour évaluer, prédire, ou surveiller le traitement de mélanomes. WO 05/116249 décrit également une méthode quantitative basée sur ces variants d'épissage de MITF. Dans la présente invention, les inventeurs ont identifié une mutation constitutionnelle récurrente du gène MITF, appelée ici E318K (selon la nomenclature de l'isoforme 4), qui est utile comme marqueur de prédisposition au cancer. Le gène MITF (facteur de transcription associé à la microphtalmie) est bien connu de l'homme du métier et peut être caractérisé par son référencement dans des bases de données comme UniGene (Hs.166017), HomoloGene (4892) and GenelD (4286). Il est également appelé MI, WS2A ou bHLHe32. Cette mutation E318K est localisée dans l'exon 9 du gène MITF, en particulier en position 952 de l'isoforme M selon la nomenclature HGVS. Elle consiste en la substitution d'un nucléotide G par un nucléotide A (c.952G>A) et résulte en la substitution d'un acide glutamique par une lysine (p.G1u3l8Lys). Cet exon 9 est commun à tous les variants d'épissage de MITF. Dans l'isoforme MITF-M, ce résidu est en position 952 du transcrit et provoque la mutation de l'acide aminé en position 318. Le terme « mutation E318K » désigne la mutation, quelque soit sa position dans les iso formes de MITF. Notamment, la position du nucléotide muté et de l'acide aminé dans les différents variants d'épissage est indiquée ci-dessous. Isoforme Autre nom ref transcrit Ref protéine Mutation ISOFORM 1 MITF-A NM 198159 NP 937802 E419K ISOFORM 2 MITF-H NM 198177 NP 937820 E403K ISOFORM 3 MITF-C NM 006722 NP 006713 E418K ISOFORM 4 MITF-M NM 000248 NP 000239 E318K ISOFORM 5 NM 198158 NP 937801 E312K ISOFORM 6 NM 198178 NP 937821 E394K Le mutant MITF E318K a montré une activité plus forte que MITF sauvage pour l'activation de la transcription du gène HIF 1 A, ce gène étant connu comme jouant un rôle majeur dans la carcinogenèse rénale (activé secondairement aux mutations «pertes de fonction » des gènes de prédisposition au cancer du rein, tels que VHL, FH, SDHB). De plus, il a été établi que cette mutation diminue la sumoylation de MITF, stabilisant ainsi peut-être la protéine ou les protéines codées par les gènes cibles. En effet, l'acide aminé E318 fait partie d'un des deux sites de sumoylation de la protéine MITF. Le gène MITF codant un facteur de transcription, la protéine MITF mutée E318K est susceptible d'activer en continu certains de ses gènes cibles. Les inventeurs ont découvert que le mutant MITF E318K est plus représenté chez des patients présentant un mélanome malin cutané conjointement à un cancer du rein. La mutation serait également plus représentée chez les sujets ayant développé un mélanome cutané malin et un cancer du rein ou dans les familles présentant des mélanomes et des cancers du rein chez des apparentés, ou un mélanome cutané et une polyglobulie, ou un mélanome cutané et un lymphome. Ce mutant est présent à une fréquence très faible (2/2846 sujets soit une fréquence d'hétérozygotes de 0,0007) chez les sujets sains témoins. Par ailleurs, il est probable que ce mutant soit également plus représenté chez les sujets ayant développé une ou des tumeurs issues de la crête neurale telles que le cancer de la thyroïde, un sarcome, un neuroblastome ou une tumeur du système nerveux central (TSNC), ou d'autres types de cancers selon les résultats préliminaires des inventeurs tels qu'un lymphome, un cancer du poumon, une polyglobulie, un cancer du rein ou une combinaison de ces types de cancer. Les sites de sumoylation comprennent classiquement le motif consensus W-KX-E dans lequel W est un acide aminé hydrophobe et X est un quelconque acide aminé. MITF possède deux sites de sumoylation : le premier site ayant la séquence IKRE (avec le K en positions respectives dans les isoformes 1, 2, 3, 4, 5 et 6 : 289, 273, 288, 182, 182 et 264) et le deuxième site ayant la séquence IKQE (avec le K en positions respectives dans les isoformes 1, 2, 3, 4, 5 et 6 : 417, 401, 416, 316, 310 et 392). Les mutations de K182 et K316 augmentent la transcription d'un gène cible, mélastatine/TRPM, mais n'influencent pas la capacité de la protéine à se lier à l'ADN, ni la localisation ou la stabilité de la protéine (Miller AJ et al, JBC, 2005, 280 : 146- 155). L'enseignement pour le mutant E318K de MITF de la présente invention est généralisable à toute mutation de MITF diminuant ou abolissant la sumoylation de la protéine MITF à un des sites de sumoylation ou au deux. Par conséquent, la présente invention concerne une méthode pour déterminer si un sujet a une prédisposition à ou une susceptibilité de développer un cancer choisi parmi la liste suivante : un mélanome cutané malin, un cancer du rein, un cancer de la thyroïde, un sarcome, un neuroblastome, une tumeur du système nerveux central (TSNC), un lymphome, un cancer du poumon, une polyglobulie, et des combinaisons de ceux-ci, comprenant la détermination dans un échantillon biologique du sujet de la présence d'une mutation dans MITF (facteur de transcription associé à la microphtalmie) diminuant ou abolissant la sumoylation de MITF, la présence de cette mutation indiquant que le sujet a une prédisposition à ou une susceptibilité de développer un tel cancer. Dans un mode de réalisation particulier, notamment lorsque la mutation dans MITF est E318K (c'est-à-dire E318K dans l'iso forme 4 ou la substitution du résidu Glu correspondant dans les autres isoformes de MITF par un résidu Lys), le cancer est choisi parmi la combinaison d'un mélanome cutané malin et d'un cancer du rein, un cancer de la thyroïde, un sarcome, un neuroblastome, une tumeur du système nerveux central (TSNC), un lymphome, un cancer du poumon, une polyglobulie, et des combinaisons de ceux-ci. De préférence, la mutation est une substitution d'un résidu lysine et/ou d'un résidu acide glutamique d'un des sites de sumoylation de MITF ou des deux sites. Ainsi, la mutation est la substitution d'un résidu sélectionné dans le tableau ci-dessous par un quelconque des 19 autres acides aminés. Isoforme Ref transcrit Ref protéine 1 er site de 2ème site de sumoylation sumoylation ISOFORM 1 NM 198159 NP 937802 K289 E291 K417 E419 ISOFORM 2 NM 198177 NP 937820 K273 E275 K401 E403 ISOFORM 3 NM 006722 NP 006713 K288 E290 K416 E418 ISOFORM 4 NM 000248 NP 000239 K182 E184 K316 E318 ISOFORM 5 NM 198158 NP 937801 K182 E184 K310 E312 ISOFORM 6 NM 198178 NP 937821 K264 E266 K392 E394 Plus précisément, un résidu lysine peut être substitué par un quelconque des 19 autres acides aminés ; et/ou, un résidu acide glutamique peut être substitué par un quelconque des 19 autres acides aminés. De préférence, la méthode comprend la détection d'une substitution du résidu « K316 » (c'est-à-dire K316 dans l'isoforme 4 ou le résidu Lys correspondant dans les autres iso formes de MITF) et/ou du résidu « E318 » (c'est-à-dire E318 dans l'iso forme 4 ou le résidu Glu correspondant dans les autres isoformes de MITF) par un quelconque des 19 autres acides aminés. Dans un mode de réalisation préféré, la méthode comprend la détection d'une substitution du résidu « E318 » (c'est-à-dire E318 dans l'iso forme 4 ou le résidu Glu correspondant dans les autres isoformes de MITF) par un quelconque des 19 autres acides aminés. Dans un mode de réalisation encore plus préféré, la méthode comprend la détection de la mutation « E318K » (c'est-à-dire E318K dans l'isoforme 4 ou la substitution du résidu Glu par un résidu Lys correspondante dans les autres iso formes de MITF). La mutation peut être détectée au niveau protéique ou nucléique. Les techniques pour identifier la mutation telle que définie ci-dessus dans le gène MITF ou ses transcrits (ARNm) sont bien connues de l'homme du métier et incluent notamment et de manière non-exhaustive le séquençage, l'hybridation sélective et/ou l'amplification sélective. Au niveau nucléique, la détection peut se faire sur un échantillon d'ADN génomique, d'ARNm, ou d'ADNc. Notamment, le séquençage de MITF peut être complet ou partiel. En effet, la méthode peut comprendre uniquement le séquençage de la région comprenant le résidu suspecté d'être muté et même uniquement le séquençage de ce résidu particulier. Par hybridation sélective est entendu que l'ADN génomique, l'ARN ou l'ADNc est mis en présence d'une sonde spécifique de MITF du mutant et éventuellement d'une sonde témoin spécifique de MITF ne présentant pas cette mutation ou de MITF sauvage. Les sondes peuvent être en suspension ou immobilisées sur un substrat. Typiquement, les sondes seront marquées pour être plus facilement détectables. Les sondes sont notamment des molécules d'acide nucléique simple-brin de 8 à 1000 nucléotides, de préférence de 10 à 800 ou de 15 à 50 nucléotides. L'acide nucléique peut être amplifié avant détection de la mutation. Ainsi, un couple d'amorces spécifiques des régions entourant la position de la mutation à détecter (c'est-à-dire en amont et en aval) sera conçu. Typiquement, les amorces sont des molécules d'acides nucléiques simple-brin de 5 à 60 nucléotides, de préférence de 8 à 25 nucléotides. Une complémentarité parfaite est préférée puisqu'elle assure une haute spécificité. Cependant, certains mésappariements peuvent être tolérés. Une fois l'amplification du gène MITF ou de l'exon contenant la mutation, ou encore d'un de ses transcrits faite, l'amplicon est utilisé pour la détection de la présence de la mutation par séquençage ou hybridation spécifique ou par toute autre technique appropriée connue de l'homme du métier. La mutation peut également être détectée par analyse des courbes de fusion (voir par exemple, WO2007/035806). La présence de la mutation peut également être détectée par amplification sélective du mutant. Ainsi, un couple d'amorces est préparé, l'une des amorces s'hybridant spécifiquement avec la séquence portant la mutation à détecter. Cette amorce sera capable d'initier l'amplification ou de s'hybrider avec sa cible uniquement si la séquence porte le nucléotide muté. Par conséquent, la présence d'un amplicon indiquerait que MITF porte la mutation testée alors, que l'absence de cet amplicon indiquerait que MITF ne présente pas cette mutation. Bien entendu, ces techniques peuvent être facilement adaptées par l'homme du métier pour détecter simultanément ou en parallèle plusieurs mutations du ou des site(s) de sumoylation. Ainsi, les techniques permettraient de détecter une ou plusieurs mutations codant pour la substitution de résidus sélectionnés parmi le groupe constitué de K182, E184, K316 et E318 dans l'isoforme 4 de MITF ou des résidus correspondant dans les autres iso formes de MITF. Lorsque la mutation est détectée au niveau protéique, la méthode utilise un anticorps capable de discriminer entre MITF présentant la mutation à détecter et MITF ne présentant pas cette mutation. Notamment, l'échantillon biologique est mis en contact avec un anticorps spécifique de MITF présentant la mutation à détecter et la présence de complexe immun est détectée. Différentes méthodes permettent de détecter ces complexes immuns comme les méthodes d'ELISA, radio-immuno-essai (RIA) et tests immuno-enzymatiques (IEMA). Par « anticorps » sont également désignés tous les fragments et dérivés d'anticorps conservant la capacité de se fixer spécifiquement au mutant à détecter de MITF par rapport au MITF ne présentant pas cette mutation. Là encore, ces techniques peuvent être facilement adaptées par l'homme du métier pour détecter simultanément ou en parallèle plusieurs mutations du ou des site(s) de sumoylation. Ainsi, les techniques permettraient de détecter une ou plusieurs substitution(s) de résidus sélectionnés parmi le groupe constitué de K182, E184, K316 et E318 dans l'iso forme 4 de MITF ou des résidus correspondant dans les autres isoformes de MITF, par exemple à l'aide d'une combinaison d'anticorps spécifique de chaque mutant de MITF présentant une ou plusieurs de ces substitutions. De manière alternative, la mutation diminuant ou abolissant la sumoylation de MITF peut être détectée au niveau protéique de manière indirecte. Ainsi, la présence de la mutation peut être détectée en mesurant la sumoylation de MITF, une diminution de la sumoylation par rapport à la protéine MITF sauvage indiquant la présence de la mutation. Les exemples détaillent comment mesurer cette sumoylation. De même, la mutation diminuant la sumoylation, la protéine MITF mutée est stabilisée et donc détectable dans des coupes tissulaires par immunohistochimie ou immunofluorescence. La détection de la mutation ou de la présence/absence de sumoylation pourrait également se faire par spectrométrie de masse (WO/2005/003390). La mutation peut être détectée dans une quelconque isoforme de MITF. Dans un mode de réalisation particulier, la mutation est détectée dans l'isoforme 4. Le terme « sujet » réfère ici à un mammifère, de préférence à un humain. Le terme « échantillon biologique » réfère ici à un échantillon de tissu, par exemple une biopsie et notamment une biopsie de peau, de rein, de thyroïde, ou de poumon, ou de liquide biologique, par exemple un échantillon de sang, de liquide céphalo-rachidien, d'urine, ou de lymphe. De préférence, l'échantillon biologique est un échantillon de sang. Les méthodes de la présente invention peuvent comprendre une étape préalable de prélèvement de l'échantillon biologique. Bien entendu, les méthodes de la présente invention considèrent également, outre la détection de la mutation diminuant ou abolissant la sumoylation de MITF, la détection d'autres marqueurs de prédisposition au cancer. La présente invention concerne également l'utilisation de moyens de détection de la mutation diminuant ou abolissant la sumoylation de MITF pour la préparation d'un kit de diagnostic destiné à déterminer si un sujet a une prédisposition à ou une susceptibilité de développer un cancer choisi parmi la liste suivante : un mélanome cutané malin, un cancer du rein, un cancer de la thyroïde, un sarcome, un neuroblastome, une tumeur du système nerveux central (TSNC), un lymphome, un cancer du poumon, une polyglobulie, et des combinaisons de ceux-ci, la présence de cette mutation indiquant que le sujet a une prédisposition à ou une susceptibilité de développer un tel cancer. Les moyens de détection peuvent comprendre ou consister en une sonde spécifique de MITF portant la mutation à détecter, un couple d'amorces permettant l'amplification d'un segment nucléotidique comprenant la mutation à détecter, un couple d'amorces dont l'une d'elles s'hybride spécifiquement avec la séquence portant la mutation à détecter (permettant ainsi une amplification sélective du mutant à détecter de MITF), un anticorps spécifique du mutant à détecter de MITF, des moyens permettant la détection et la mesure de la sumoylation de MITF, des contrôles négatifs permettant de détecter MITF ne présentant pas la mutation à détecter, ou des combinaisons de ceux-ci. Dans un mode de réalisation particulier, notamment lorsque la mutation dans MITF est E318K (c'est-à-dire E318K dans l'iso forme 4 ou la substitution du résidu Glu correspondant dans les autres isoformes de MITF par un résidu Lys), le cancer est choisi parmi la combinaison d'un mélanome cutané malin et d'un cancer du rein, un cancer de la thyroïde, un sarcome, un neuroblastome, une tumeur du système nerveux central (TSNC), un lymphome, un cancer du poumon, une polyglobulie, et des combinaisons de ceux-ci. L'intérêt de la détection d'une prédisposition ou d'une susceptibilité au cancer est que le sujet peut bénéficier d'un suivi clinique ou d'une surveillance permettant de détecter l'apparition d'un cancer à un stade précoce et donc d'augmenter les chances de guérison. Par ailleurs, la détection de la mutation peut permettre d'orienter la prise en charge thérapeutique du patient et/ou d'augmenter l'efficacité des traitements. Par ailleurs, le sujet identifié peut également bénéficier d'un traitement préventif. Ce traitement est destiné à empêcher ou retarder l'apparition du cancer. Ainsi, la présente invention concerne également une méthode pour sélectionner les patients pouvant bénéficier d'un traitement préventif ou d'une surveillance médicale comprenant la détermination de la susceptibilité au cancer du patient par la méthode selon la présente invention et la sélection des sujets présentant la mutation diminuant ou abolissant la sumoylation de MITF. Le traitement préventif envisagé peut comprendre l'administration de composés polyphénoliques. En effet, il a été notamment montré que des composés polyphénoliques de l'enveloppe du riz fermentée diminuent le niveau de protéine MITF (5). Ainsi, ce traitement pourrait contrecarrer la diminution de la sumoylation de la protéine MITF et ses conséquences fonctionnelles sur ses gènes cibles, MITF étant un facteur de transcription. Par ailleurs, les polyphénols du thé noir ont une action chimiopréventive qui pourrait se faire par un arrêt du cycle cellulaire et par un mécanisme pro-aptotique (6). Par conséquent, la présente invention concerne les composés polyphénoliques pour une utilisation dans le traitement préventif du cancer chez des sujets présentant une mutation de MITF diminuant ou abolissant la sumoylation de MITF et l'utilisation de composés polyphénoliques pour la préparation d'un médicament destiné au traitement préventif du cancer (chimioprévention) chez des sujets présentant une mutation de MITF diminuant ou abolissant la sumoylation de MITF. Elle concerne en outre une méthode de traitement comprenant l'administration d'une dose thérapeutique efficace de composés polyphénoliques à des sujets présentant une mutation de MITF diminuant ou abolissant la sumoylation de MITF, prévenant ou retardant ainsi l'apparition d'un cancer. De préférence, les composés polyphénoliques sont des composés polyphénoliques de l'enveloppe du riz fermentée ou des polyphénols du thé noir. La demande de brevet WO 05/099721 décrit également de nombreux autres composés polyphénoliques utiles pour la prévention du cancer, notamment via leur effet antioxydant. L'invention sera mieux comprise à l'aide des exemples qui suivent, lesquels se veulent illustratifs et non limitatifs. BREVE DESCRIPTION DES FIGURES Figure 1 : (Fig la) Arbre généalogique de la première famille à cas multiples de mélanomes dans laquelle le mutant MITF E318K a été identifié ; (Fig lb) électrophorégramme de la mutation constitutionnelle (sang) chez une personne atteinte de mélanome et cancer du rein. Figure 2 : Activation de la transcription du promoteur de HIF1A mais pas de MET en présence de la protéine MITF portant la mutation E318K par rapport à la protéine MITF sauvage. Figure 3 : Diminution de la sumoylation de la protéine MITF portant la mutation E318K. EXEMPLES Les inventeurs ont étudié le gène MITF, considéré comme un oncogène et donc comme gène candidat. Ils ont d'abord étudié s'il existait des mutations du gène MITF (3p14) dans le site de clivage par les caspases (effet anti-apoptotique) dans des familles à cas multiples de mélanome (4), par séquençage de toutes les isoformes. Leurs résultats préliminaires ont montré la présence d'un variant germinal de MITF-M c.952G>A, p.G1u318Lys (E318K) dans une famille d'origine basque espagnole (TRY) à cas multiples de mélanome (avec 2 cancer du rein, 3 tumeurs du système nerveux central, un cancer du poumon et un cancer gastrique du coté maternel d'où vient la E318K), avec transmission coté paternel d'un haplotype 1p22. Le variant était absent chez 180 témoins français/caucasiens et 96 basques espagnols (Figure 1 a et b). Dans des cellules de mélanome B16 (souris), les inventeurs ont montré que le variant MITF, c.952G>A, p.G1u318Lys (E318K) avait une action supérieure à la forme sauvage pour induire la transcription du gène HIF 1 a et pas celle du gène MET (Figure 2). Les inventeurs ont donc posé l'hypothèse suivante : HIF est le facteur transformant des cellules rénales en l'absence de VHL, en situation d'hypoxie; VHL (mutations pertes de fonction d'un gène suppresseur de tumeur) et MET (mutations activatrices d'un oncogène) sont deux gènes de prédisposition au cancer du rein ; HIF activé par MITF muté E318K pourrait donc avoir le même effet que l'absence de VHL. Les inventeurs ont donc montré que la mutation E318K du gène MITF était présente chez 4/55 patients et absente chez 276 témoins (p= 0,0007) de la sous-collection « mélanome et cancer du rein (cas sporadiques) » de la collection MELARISK. Les inventeurs ont ensuite exploré la fréquence du mutant E318K dans différentes collections biologiques de l'IGR (Institut Gustave Roussy, Villejuif, France). D'autres porteurs de cette mutation ont été identifiés : une patiente ayant développé un cancer du rein juvénile à translocation TFE3 dont la mère avait eu un cancer du sein puis un mélanome, une patiente ayant développé 3 mélanomes et un lymphome; un cas index d'une famille à cas multiple de mélanome; un cas index ayant développé plusieurs mélanomes ; deux patients ayant développé des mélanomes nodulaires ; une patiente ayant développé un mélanome, un de ses oncles ayant eu une TSNC ; deux patients ayant développé un cancer papillaire du rein ; un patient atteint de polyglobulie. En effet, VHL est l'un des trois gènes de prédisposition à la polyglobulie. Cette mutation E318K est située dans l'un des deux sites de sumoylation de la protéine (motif WKXE, 2 sites K182 et K316). Les inventeurs ont montré une diminution de la sumoylation de MITF en présence de la mutation E318K. (Figure 3).25 Tableau 1 : Résultats du criblage du mutant MITF E318K Mélanome Nb MITF MITF p-value et cancer du échantillon sauvage E318K rein Sporadique 55 51 4 0,0007 Familial 50 49 1 0,1534 Sporadique 105 100 5 0,0015 et familial Cancer 24 22 2 0,0062 papillaire du rein Mélanome 1 0,1687 et TNSC, familial Polyglobulie 1 14 1 13 I 1 0,0483 Lymphome 116 115 I1 0,0548 Mélanomes Mélanomes 107 106 1 0,2794 multiples Familiaux Mélanomes 34 33 1 0,1097 multiples Sporadiques Mélanomes 90 88 2 0,0600 nodulaires Mélanomes 49 48 1 0,1508 multiples cutanés familiaux Les populations témoins utilisées sont celles des donneurs du sang et du CEPH (N=276). Matériels et Méthodes Melarisk est une collection unique de familles enclines aux mélanomes (MELARISK) qui a été initiée en 1985 par l'Institut Gustave Roussy (Pr AVRIL) et l'INSERM ((Florence Demenais, U946), avec une participation des dermatologistes (en particulier, depuis 2005 le CHU Cochin, Pr AVRIL et les Hospices Civils de Lyon, Pr THOMAS) et d'oncogénéticiens. Le matériel biologique est conservé à la Biobanque de susceptibilité au cancer de l'IGR (sang, lymphocytes congelés, lignées cellulaires lymphoblastiques établies par le Généthon, ADN). Les données familiales, démographiques, cliniques et de facteur de risque de mélanome ont été collectées depuis plusieurs années maintenant et sont stockées dans une base de données MySQL dans l'unité INSERM U946. Séquençage direct de MITF Les amorces utilisées pour le séquençage de MITF sont données dans le tableau ci-dessous. Le protocole d'amplification consistait en 35 cycles avec des étapes de température à 94°C, 60°C, et 72°C de 30 secondes chacune. Les produits de PCR ont été séquencés avec la technique de « Big Dye Terminator », version 3.0 (Applied Biosystems, Foster City, Californie) sur des séquenceurs ABI Prism© 3730 Genetic Analyzer (Applied Biosystems, Foster City, Californie Tableau. Séquences des amorces pour le gène MITF Fragment amplifié Séquence Sens 5' > 3' Séquence Antisens5' > 3 'Taille du produit (pb) Exon 1 apartl SEQ ID NO 1 SEQ ID NO 2 377 Exon 1 apart2 SEQ ID NO 3 SEQ ID NO 4 394 Exon lb SEQ ID NO 5 SEQ ID NO 6 298 Exon le SEQ ID NO 7 SEQ ID NO 8 232 Exon 2 /Exon le SEQ ID NO 9 SEQ ID NO 10 396 Exon 1 (M) SEQ ID NO 11 SEQ ID NO 12 389 Exon 2 SEQ ID NO 13 SEQ ID NO 14 426 Exon 3 SEQ ID NO 15 SEQ ID NO 16 271 Exon 4 SEQ ID NO 17 SEQ ID NO 18 257 Exon 5 SEQ ID NO 19 SEQ ID NO 20 447 Exon 6a/6b SEQ ID NO 21 SEQ ID NO 22 280 Exon 7 SEQ ID NO 23 SEQ ID NO 24 320 Exon 8 SEQ ID NO 25 SEQ ID NO 26 563 Exon 9 SEQ ID NO 27 SEQ ID NO 28 544 Génotypage de la mutation MITF E318K par PCR avec une sonde MGB Taqman Les réactions de PCR ont été faites avec 10 ng d'ADN génomique en présence de 0.2 ,umol/L sondes MGB TaqMan soit (5'ùVIC-ATC AAG CAA GAA CCC Gù3' - SEQ ID No 29) qui s'apparie parfaitement avec la séquence de MITF sauvage ou (5'-6-FAM-CAA GCA AAA ACC CG-3' - SEQ ID No 30) qui s'apparie parfaitement avec la séquence de MITF qui code la mutation E318K. Les concentrations finales des autres réactifs ont été les suivantes: 1 x Universal Master mix (Applied), 0,4 ,umol/L d'amorce sens (5'ûTGCTCTCCAGATTTGGTGAATCGû3' - SEQ ID No 31), 0,4 ,umol/L d'amorce antisens (5'ûGGTCTTGGCTGCAGTTCTCAAû3' - SEQ ID No 32). La taille de l'amplicon de PCR est de 67 pb. Le cyclage de PCR a été fait sur un thermocycleur 2720 ABITM comme suit: 95 °C pendant 15 min; 30 cycles de 95 °C pendant 15 s et 60 °C pendant 1 min. La discrimination allélique a été faite par mesure finale de fluorescence sur un 7900HT Fast real Time PCR system ABITM et analysée en utilisant le logiciel SDS v2.3 ABITM. Des échantillons d'ADN soit sauvage soit E318K ont été inclus dans chaque expérience de génotypage comme contrôles. Les échantillons mutés génotypés ont été vérifiés par séquençage direct en utilisant le protocole et les amorces ci-dessus détaillés pour l'exon 9 de MITF. Plasmides La construction pCDNA3-Mi de la forme M de MITF a été décrite précédemment (7). Les mutations de MITF, K182R et/ou E318K, ont été générées avec la méthode QuickChange (Stratagene) en utilisant les amorces sens suivantes et leurs compléments antisens: Mi-K182R 5'-cttcccaacataagaagggagctcacagc-3' (SEQ ID No 33); MI-E318K 5'-ggatcatcaagcaaaaaccagttcttgag-3' (SEQ ID No 34). La présence de mutations a été confirmée par séquençage. His-SUMO1 et His-HA-SUMO2 étaient des dons de M. A. Dejean et ont été décris dans l'article suivant (8). Co-transfections et immunodétection Des cellules HEK293 cultivées sur des plaques à 6 puits (104 cellules/puit) ont été transfectées avec les plasmides indiqués (2 µg d'ADN total/puit) et du FuGENE 6TM (Roche Applied Science). 48 heures après, les cellules ont été lavées avec du PBS puis lysées à 95 °C dans 1 xtampon de charge (41,6 mM Tris, pH 6,8, 1,5% SDS, 6,7% glycérol) et portées à ébullition pendant 5 minutes supplémentaires. Les protéines ont été séparées par électrophorèse dans un gel 10% SDS-polyacrylamide et transférées sur des membranes PVDF. Les protéines ont été détectées en utilisant l'ECL (Amersham) et des anticorps anti-MITF (Abcam), anti-HA tag (Abcam), anti-SUMO1 (Santa Cruz Biotech) ou anti-ERK2 (Santa Cruz Biotech).30 Tests de mesures d'expression de rapporteurs Des cellules humaines 501mel et de souris B16 ont été ensemencées dans des plaques à 24 puits (25x103 cellules/puit) et, les jours suivants, les cellules ont été transfectées de manière transitoire en utilisant 0,3 µg de plasmide rapporteur (pHIFla et pMet), 0,05 µg de plasmides codant MIT ou de pCDNA2 vide, 2µl de réactif lipofectamine (Invitrogen) et 0,05 µg pCMV(3Gal pour contrôler la variabilité dans l'efficacité de transfection. Les cellules ont été lysées et testées pour les activités luciférase et (3ùgalactosidase 48 heures après. Les transfections ont été répétées au moins trois fois. REFERENCES 1. Levy,C., et al. (2006) Trends Mol.Med., 12, 406-414. 2. Garraway,L.A., et al. (2005) Nature, 436, 117-122. 3. Kido,K., et al. (2009) Cancer Sci. 100, 1863-1869. 4. Larribere, L., et al. (2005) Genes Dev. 19, 1980-1985. 5. Chung, S.Y., et al. (2009) Biosci. Biotechnol. Biochem. 73, 1704-1710. 6. Halder, B., et al. (2009) Carcinogenesis 29, 129-138. 7. Bertolotto C, et al. (1998) J Cet/ Biol;142:827-35. 8. Bischof O, et al. (2006) Mol Cell;22:783-94.20 REVENDICATIONS1- Méthode pour déterminer si un sujet a une prédisposition à ou une susceptibilité de développer un cancer choisi parmi un mélanome cutané malin, un cancer du rein, un cancer de la thyroïde, un sarcome, un neuroblastome, une tumeur du système nerveux central (TSNC), un lymphome, un cancer du poumon, une polyglobulie, et des combinaisons de ceux-ci, comprenant la détermination dans un échantillon biologique du sujet de la présence d'une mutation dans MITF (facteur de transcription associé à la microphtalmie) diminuant ou abolissant la sumoylation de MITF, la présence de cette mutation indiquant que le sujet a une prédisposition à ou une susceptibilité de développer un tel cancer. 2- Méthode selon la revendication 1, dans laquelle la mutation dans MITF est une substitution d'un résidu lysine et/ou d'un résidu acide glutamique d'un des sites de sumoylation de MITF ou des deux sites. 3- Méthode selon la revendication 2, dans laquelle la mutation est la substitution d'un résidu sélectionné dans le tableau ci-dessous par un quelconque des 19 autres acides aminés. Isoforme Ref transcrit Ref protéine 1 er site de sumoylation 2eme site de sumoylation ISOFORM 1 NM 198159 NP 937802 K289 E291 K417 E419 ISOFORM 2 NM 198177 NP 937820 K273 E275 K401 E403 ISOFORM 3 NM 006722 NP 006713 K288 E290 K416 E418 ISOFORM 4 NM 000248 NP 000239 K182 E184 K316 E318 ISOFORM 5 NM 198158 NP 937801 K182 E184 K310 E312 ISOFORM 6 NM 198178 NP 937821 K264 E266 K392 E394 4- Méthode selon la revendication 3, dans laquelle la mutation est une substitution de K316 ou E318 de l'isoforme 4 ou du résidu correspondant dans les autres isoformes de MITF. 5- Méthode selon la revendication 4, dans laquelle la mutation est une substitution de E318 de l'isoforme 4 ou du résidu correspondant dans les autres isoformes de MITF, de préférence par un résidu Lysine.- Méthode selon l'une quelconque des revendications, dans laquelle la mutation est détectée au niveau protéique ou nucléique. 7- Méthode selon l'une quelconque des revendications, dans laquelle la mutation est détectée indirectement par la mesure de la sumoylation de MITF, une diminution de la sumoylation par rapport à la protéine MITF sauvage indiquant la présence de la mutation E318K. 8- Méthode selon l'une quelconque des revendications, dans laquelle le cancer est choisi parmi la combinaison d'un mélanome cutané malin et d'un cancer du rein, la polyglobulie, et les lymphomes. 9- Méthode pour sélectionner les patients pouvant bénéficier d'un traitement préventif ou d'une surveillance médicale comprenant la détermination de la susceptibilité au cancer du patient par la méthode selon l'une quelconque des revendications 1-8 et la sélection des sujets présentant la mutation diminuant ou abolissant la sumoylation de MITF. 10- Méthode selon la revendication 9, dans laquelle le traitement préventif comprend l'administration de composés polyphénoliques. 11- Méthode selon la revendication 10, dans laquelle les composés polyphénoliques sont des composés polyphénoliques de l'enveloppe du riz fermentée ou des polyphénols du thé noir.