Brevet FR2950358A1 — publié le 20110325

DESCRIPTION La présente invention concerne un dispositif jetable permettant l'amplification d'au moins un acide nucléique cible. La présente invention concerne également un procédé d'amplification d'un tel acide nucléique cible, qui utilise un dispositif précédemment cité. Le dispositif, comme le procédé, sont utilisables avec tout type de technique d'amplification, tel que la PCR ou une technique d'amplification post- transcriptionnelle, telle que la TMA ou la NASBA. L'état de la technique est constitué par le document WOA-99/33559 qui concerne une cartouche intégrée permettant la manipulation de fluides, mais également du même déposant, le document WO-A-2006/132886, qui traite d'une méthode et un appareil pour stocker et utiliser des réactifs sous forme de billes. Ce système se compose d'un instrument compact à quatre modules identiques et démontables et d'une cartouche à puits multiple qui intègre une vanne multivoies. Un piston permet de déplacer les liquides d'un puits à un autre de la cartouche afin de les mélanger. Parmi les différentes zones de la cartouche, chacune d'elles peut soit permettre : • la filtration sur matrice de silice pour réaliser une capture, une purification et une concentration de 25 l'échantillon étudié, • la lyse qui, par l'intermédiaire de billes de verre et sous l'action d'ultrasons générer par un instrument, permet de lyser les membranes cellulaires des cellules présentes dans l'échantillon, 30 • l'amplification est réalisée par transfert de tout ou partie de l'éluat dans la zone d'amplification et de détection (PCR) de la cartouche. La cartouche peut intégrer des réactifs solides, liquides ou les deux simultanément. Ce système est donc totalement intégré et automatisé, avec une temps de rendu de résultat assez court (de l'ordre d'une heure). Cependant, de part le concept choisi, la cartouche est relativement complexe et coûteuse. Elle est donc peu adaptée à un système haute cadence. De plus elle ne permet pas de réaliser plusieurs tests par échantillon autrement que par multiplexage des amorces d'amplification et/ou des sondes de détection dans le même volume. Ceci rend le développement d'essais biologiques beaucoup plus complexe et long avec des compromis inévitables au niveau des performances de détection. Notre invention est nettement mieux adaptée à de hautes cadences car la carte que nous protégeons peut être facilement manipulée par un automate à la manière d'un simple cône de pipetage. De plus son encombrement latéral est réduit ce qui permet d'envisager une architecture haute cadence utilisant un carrousel de lecture en fluorescence de diamètre acceptable pour un système dimensionné pour la haute cadence. Enfin le design allongé, avec une surface plane, permet facilement de mouvoir cette carte au sein d'un carrousel de lecture nécessitant : • d'assurer un bon contact thermique pour les cycles 25 thermiques (type PCR) ou une température constante et homogène (type NASBA, TMA) tout en permettant de déplacer ladite carte par glissement sur les blocs d'incubation, et • de réaliser une lecture en fluorescence, la carte pouvant 30 être aisément déplacée devant les différentes têtes de lecture (différentes longueurs d'onde). Par haute cadence on veut dire une cadence supérieure à 300 tests par jour, avec un coût par test faible et un encombrement réduit. Comparativement à ce système, la présente invention permet d'avoir des coûts par test compatibles avec du diagnostic viral ou microbiologique en routine, à haute cadence, mais également pour les tests déportés auprès des patients, autrement appelés en anglais POCT (Point Of Care Testing), grâce notamment à la simplicité du consommable développé, à sa fonction depipetage intégrée et au volume réduit de réaction d'amplification, permettant de réduire le coût par test (les enzymes en biologie moléculaire constituent la majeure partie de ce coût par test pour la partie « réactifs » et une diminution du volume réactionnel permet donc d'avoir une réduction proportionnelle à la réduction du volume)(5 pL au lieu de 50 à 80 pL dans ces demandes). L'état de la technique comprend également le document W0-A-2004/004904 qui concerne un appareil conçu pour réaliser des tests rapides de manière autonome et mobile, dans le cadre notamment du bio-terrorisme, de la guerre bactériologique, et des POCT, appareil qui nécessite un minimum d'opérations manuelles. Ce système utilise une cartouche munie de ports d'entrées reliés à une pochette souple à un ou plusieurs compartiments dans lesquels sont lyophilisés les réactifs d'amplification (PCR). La lecture de la fluorescence s'effectue directement au travers du film souple déformable. Les pochettes sont maintenues sous vide ce qui permet après l'introduction des échantillons d'acides nucléiques via l'entrée du port du consommable, d'effectuer un remplissage automatique et calibré et de dissoudre les réactifs lyophilisés préalablement à l'amplification par PCR. Ce dispositif n'est pas adapté pour réaliser des tests de routine à haute cadence. Ce système de répartition et/ou division fluidique par vide est efficace pour des protocoles à une seule étape fluidique (remplissage) utilisable dans le cas d'une amplification par PCR. Mais il est mal adapté au procédé d'amplification d'acides nucléiques, qui nécessitent de remettre en suspension successivement plusieurs réactifs, tel que, c'est le cas pour les amplifications NASBA ou TMA. Ceci nécessite donc d'ajouter une vanne et de maintenir un vide partiel entre les deux chambres contenants les réactifs d'amplification, entraînant une complexification du consommable et de l'instrument associé. De plus le consommable ne permet pas d'aspirer directement, sans intervention manuelle, l'échantillon contenant des acides nucléiques (dépôt à la pipette) il n'y a donc pas de fonction pipetage. De plus, ce dispositif, qui associe une partie rigide et une partie poche souple, n'est pas aisément gérable dans une architecture dans laquelle l'utilisateur peut mettre un échantillon à tout moment même pendant le fonctionnement de l'instrument, architecture dite « Random Access ». Notre invention, au contraire, propose une carte qui peut facilement être manipulée par un robot et être utilisée comme un cône pour pipeter des solutions, les mélanger, reprendre l'éluat et l'aspirer en son sein pour effectuer des réactions telles que des réactions d'amplification. La carte, selon la présente invention, peut donc être utilisée comme un cône de pipette permettant de réaliser des ajouts, d'aspirer des réactifs liquides dans des tubes, et ainsi effectuer les étapes préalablement à l'étape d'amplification/détection. Avec une automatisation adaptée, ladite carte peut également prélever et retirer plusieurs cônes en même temps. A cette fin des modes de réalisation, comportant plus d'une voie fluidique, sont présentés dans la suite de ce document. La présente invention de la Demanderesse, par son design original, permet de s'adapter à la fois au protocole d'amplification PCR (ou RT-PCR) ne nécessitant qu'un réactif (et donc réalisable dans une seule chambre) ou au protocole d'amplification à deux étapes nécessitant de séparer, dans deux chambres distinctes, les réactifs d'amplification, comme c'est le cas avec les amplifications post-transcriptionnelles. L'invention résout également le problème d'architecture de l'instrument, en proposant un consommable (ou carte) pouvant être utilisé soit dans un système POCT (quelques tests par jour) soit dans un système de diagnostic de routine haute cadence (supérieure à 300 tests par jour) par l'intégration de la fonction de pipetage, qui utilise des cônes classiques (rapportés ou intégrés). 10 L'état de la technique est aussi constitué pour le document WO-A-2007/100500. Il s'agit d'un système très orienté POCT ou le bas débit en biologie moléculaire. Ce système simple d'utilisation permet de travailler directement à partir 15 d'une goutte de sang (quelques dizaine de pL). L'instrument associé est également compact grâce à une combinaison d'actionneurs permettant d'isoler les compartiments du consommable de forme tubulaire et ainsi de permettre le transfert et le mélange des liquides dans l'ordre défini lors 20 de la fabrication par le remplissage préalable du consommable. Un inconvénient majeur de ce système est son manque de flexibilité sur le protocole biologique à réaliser. D'une part, les volumes d'échantillons et de tampons (particules magnétiques de capture des acides nucléiques, tampons de 25 lavage et d'élution) sont figés par le volume de chaque compartiment du consommable, tel que défini à la fabrication du consommable. Il est connu qu'il est souvent nécessaire d'avoir recours à la modification du protocole biologique, afin d'obtenir de meilleures performances de capture, 30 d'amplification et de détection des acides nucléiques en fonction de différents paramètres, comme par exemple la nature de l'échantillon biologique traités, la présence ou non d'inhibiteurs (crachat, LBA, plasma, urine, sang total, etc.). Avec ce système de l'état de la technique, la modification des protocoles nécessite de créer à chaque fois un consommable différent avec des volumes différents pour chaque compartiment et ainsi de modifier les zones de scellement, avec une contrainte très forte liée à l'emplacement des zones d'implantation des actionneurs mobiles dans l'instrument associé (vannes et pistons pour la rupture par ur-pression desdites zones de scellage). D'autre part, le volume d'échantillon reste très réduit et ne couvre donc pas l'ensemble des besoins des utilisateurs notamment ceux liés aux tests partant de plusieurs millilitres d'échantillon. D'autre part, l'objet souple est difficilement gérable par un automate sauf à avoir un coût supplémentaire important. Il n'a pas de fonction pipetage ni de souplesse sur le choix des volumes d'élution et de lavage, et donc moins de flexibilité dans la préparation des échantillons. La demanderesse a également déposé un certain nombre de documents qui peuvent constituer l'état de la technique il s'agit notamment de la demande de brevet EP-B-1.187.678 qui concerne un dispositif de mise en oeuvre d'une carte d'analyse au sein de laquelle des étapes réactionnelles et des transferts de fluides sont réalisés sous l'effet de moyens de contrôle interne à la carte. Un problème de ce genre de dispositif est qu'il est obligé de fonctionner à l'aide de vannes qui sont constituées d'éléments déformables sous l'action d'un actionneur ce qui entraîne la fermeture directe ou indirecte des canaux associés aux vannes. Le problème essentiel avec ce dispositif est la complexité. Ainsi la présence de vannes complexifie considérablement la réalisation de la carte d'analyse ainsi formée et grève son prix de production, et d'autre part, il y a besoin de nombreux éléments extérieurs (actionneurs) pour permettre l'actionnement de l'ensemble desdites vannes. La présente invention se propose de résoudre les problèmes mis en exergue par l'ensemble des documents de l'état de la technique ci-dessus mentionnés. Pour ce faire, elle propose un dispositif qui est jetable et qui répond à un certain nombre de caractéristiques techniques. Dans un mode particulièrement intéressant de réalisation de l'invention, le dispositif est un consommable qui est considéré comme une pipette, embarquant les réactifs séchés ou lyophilisés nécessaires à une amplification de cibles ARN ou ADN à partir d'un volume réduit d'acides nucléiques (5 à 10 pL), d'où une réduction des coûts liés aux réactifs, et intégrant une vanne pour éliminer tous risques de contamination. Il s'agit d'une vanne à tiroir, normalement ouverte puis fermée après localisation du volume réactionnel dans la zone de lecture, lorsqu'il n'y a plus d'étapes à réaliser. Ce type de dispositif a de nombreuses qualités inconnues de l'état de la technique : • Capacité à réaliser, à partir de ce concept, des automates dans une version POCT (traitement par lot de 8-24 échantillons par lot) et dans une version d'automate haute cadence en utilisant le même consommable. • Prélèvement automatique, par déplacement de l'embout rapporté ou faisant partie intégrante du dispositif selon l'invention, du volume d'acide nucléique purifié permettant de réduire le nombre d'étapes manuelles, ce qui par conséquent permet de simplifier l'automatisation d'un appareil automate utilisant de tels consommables. • Capacité à intégrer dans un même instrument associé une amplification PCR ou NASBA pour le POCT. • Simplification de l'instrumentation par l'intégration dans le dispositif de réactifs embarqués et lyophilisés ou séchés, pouvant être dissous et mélangés successivement par simple déplacement au sein dudit dispositif dont la configuration du circuit fluidique facilite cette dissolution et ce mixage. • Capacité à effectuer des mono-tests (un jeu d'amorces d'amplification par canal fluidique au sein du dispositif), des tests multiplex (avec au moins deux jeux d'amorces par canal) ou par panel (au moins deux jeux d'amorces séparés dans au moins deux canaux) à partir d'une architecture instrumentale commune. • Automatisation totale du protocole d'amplification avec un dispositif peu onereux et une instrumentation associée qui est compact. • Réduction de la durée totale d'amplification (notamment en NASBA) par réduction du temps de dénaturation par rapport à une amplification « conventionnelle » (1 minute versus 5 à 10 minutes) du fait d'un chauffage à travers le film fin d'operculage du canal réactionnel, en lieu et place d'un tube plastique plus épais, dont l'inertie thermique est défavorable. • Pas de contrainte de temps de vie de l'enzyme par rapport à une automatisation classique, les réactifs, embarqués dans ledit dispositif, restant secs jusqu'à leur reprise par l'échantillon liquide à amplifier. La présente invention concerne un dispositif jetable permettant l'amplification d'au moins un acide nucléique cible, présent dans un échantillon liquide et biologique d'intérêt, qui est constitué d'un corps solide, d'au moins un canal fluidique connectant une entrée, par laquelle tout ou partie de l'échantillon d'intérêt peut être aspiré et/ou refoulé, et une sortie, qui est elle-même raccordée à un moyen d'aspiration-refoulement dudit échantillon d'intérêt, le canal fluidique comprenant en outre de l'entrée jusqu'à la sortie : • un premier compartiment contenant tout ou partie des constituants thermostables nécessaires à la réalisation de l'amplification, • un moyen de mélange des constituants avec l'échantillon d'intérêt, • un deuxième compartiment contenant tout ou partie des constituants non-thermostables nécessaires à la réalisation de l'amplification, • et en plus au moins une zone destinée au chauffage dudit échantillon d'intérêt mélangé auxdits constituants d'amplification, afin de permettre l'amplification de l'acide nucléique cible. Selon un mode de réalisation, le dispositif permettant la détection des amplicons est caractérisé par le fait qu'il 15 comprend de surcroît au niveau du deuxième compartiment, tout ou partie des constituants de détection nécessaires à la détection des amplicons. Selon une autre mode de réalisation, le dispositif, permettant la détection des amplicons, se caractérise par le 20 fait qu'il comprend de surcroît au niveau du canal fluidique un troisième compartiment contenant tout ou partie des constituants nécessaires à la détection des amplicons. Toujours selon un autre mode de réalisation, le dispositif comprend de surcroît au niveau du canal fluidique un troisième 25 compartiment ne contenant rien mais servant à la détection ultérieure des amplicons dans un environnement propre. Selon une variante de réalisation, le dispositif, décrit au paragraphe précédent, le troisième compartiment est situé entre le deuxième compartiment et la sortie du dispositif. 30 Quel que soit le mode ou la variante de réalisation, l'entrée du dispositif reçoit un cône de pipette ou l'embout de pipette possède une configuration en forme de cône de pipette. 10 Quel que soit le mode ou la variante de réalisation qui précède, le dispositif d'aspiration-refoulement est de type à piston tel que par exemple une pipette. Quel que soit le mode ou la variante de réalisation qui précède, la section du canal est constante et les compartiments sont d'une section plus importante. Selon un mode de réalisation multi-voies, l'entrée est en relation avec au moins deux canaux fluidiques. Toujours selon un mode de réalisation multivoies, 10 sortie est constituée par au moins deux canaux fluidiques. Quel que soit le mode ou la variante de réalisation qui précède, les constituants sont formés de composés biologiques lyophilisés ou séchés, solubles dans l'échantillon d'intérêt. Quel que soit le mode ou la variante de réalisation qui 15 précède, le moyen d'aspiration-refoulement est partie intégrante du dispositif jetable. Selon cette dernière variante de réalisation, le moyen d'aspiration-refoulement est constitué d'un cylindre connecté au canal fluidique et d'un piston mobile au sein du cylindre 20 manuellement ou par l'intermédiaire d'un actionneur. Quel que soit le mode ou la variante de réalisation qui précède, le moyen de mélange est constitué du canal fluidique dont le cheminement comprend au moins une chicane. 25 La présente invention propose également un procédé d'amplification d'au moins un acide nucléique cible, présent dans un échantillon liquide et biologique d'intérêt, réalisé au sein d'un dispositif précédemment décrit, qui consiste : (a) aspirer par l'entrée tout ou partie de l'échantillon 30 d'intérêt au sein du dispositif, (b) déplacer ledit échantillon pour y dissoudre les constituants d'amplification thermostables, (c) mélanger échantillon et constituants thermostables, (d) appliquer un premier gradient de température afin de dénaturer l'acide nucléique d'intérêt, (e) déplacer la mixture pour y dissoudre les constituants d'amplification non-thermostables, (f) mélanger mixture et constituants non-thermostables, et (g) appliquer au moins un second gradient de température afin d'amplifier l'acide nucléique dénaturé. Selon un mode de réalisation, les constituants d'amplification thermostables de l'étape (b) contiennent également des enzymes de restriction, qui ne sont pas forcément thermostables, mais qui permettent le clivage en des positions prédéterminées des acides nucléiques d'intérêt, qui sont des acides désoxyribonucléiques, préalablement à l'application du premier gradient de température de l'étape (d). Selon un autre mode de réalisation, qui peut être utilisé en complément avec le mode précédemment mentionné, la détection des amplicons consiste, après l'étape (g) à : (h) déplacer la nouvelle mixture pour y dissoudre les constituants de détection. (i) mélanger mixture et constituants de détection, et (j) détecter la présence d'amplicons. Selon un autre mode de réalisation, qui peut être utilisé en complément avec au moins l'un des modes précédemment mentionné, l'amplification est une amplification PCR, pour laquelle le premier gradient de température est compris entre 90 et 100°C, et les seconds gradients de température est une alternance de la température en trois étapes différentes : • entre 90 et 100°C pour la première température de dénaturation, préférentiellement d'environ 94°C, • entre 50 et 60°C pour la deuxième température d'hybridation, préférentiellement d'environ 55°C, • entre 70 et 75°C pour la troisième température de polymérisation, préférentiellement d'environ 72°C. Selon un autre mode de réalisation, qui peut être utilisé en complément avec au moins l'un des modes précédemment mentionnés, l'amplification est une amplification post transcriptionnelle (NASBA ou TMA), pour laquelle le premier gradient de température est compris entre 60 et 70°C, préférentiellement d'environ 65°C, et le second gradient de température est compris entre entre 40 et 50°C pour le second gradient de température de polymérisation. Selon un autre mode de réalisation, qui peut être utilisé en complément avec au moins l'un des modes précédemment mentionné, le premier gradient de température est appliqué au niveau du premier compartiment et/ou du moyen de mélange, et le ou les seconds gradients de température est ou sont appliqués au niveau du moyen de mélange et/ou du second compartiment et/ou du troisième compartiment. Toujours selon un autre mode de réalisation, qui peut être utilisé en complément avec au moins l'un des modes précédemment mentionné le premier gradient de température est appliqué pendant 5 à 20 minutes, préférentiellement 15 minutes, et que le ou les seconds gradients de température est ou sont appliqués : • dans le cas d'une amplification PCR : pour la dénaturation, pendant moins de une minute, préférentiellement de 2 à 20 secondes, préférentiellement 5 secondes, pour l'hybridation, pendant moins de une minute, préférentiellement de 2 à 20 secondes, préférentiellement 5 secondes, et pour la polymérisation, pendant moins de deux minutes, préférentiellement de 5 à 80 secondes, préférentiellement 10 secondes, dans le cas d'une amplification posttranscriptionnelle, pendant moins de deux heures, préférentiellement de 5 à 80 minutes, et encore plus préférentiellement environ 60 minutes dans le cas d'acides nucléiques cibles ARN, ou environ 90 minutes dans le cas d'acides nucléiques cibles ADN. 10 Les termes suivants peuvent être indifféremment utilisés au singulier ou au pluriel. Le terme « constituant » veut aussi bien dire « réactif », « réactif d'amplification », « réactif d'extraction » ou « réactif de purification » ou « matière 15 première » et désignent les réactifs, tels que les tampons de réaction, les enzymes, les nucléosides mono-, bi- ou triphosphates, mais aussi les solvants, les sels nécessaires à la réalisation d'une réaction d'extraction, de purification ou d'amplification enzymatique d'un acide nucléique. 20 Par « contenant » ou « contenant plastique » au sens de la présente invention, on entend désigner tout récipient tel que les tubes, les cônes ou embouts de pipettes, qu'ils soient en plastique (par exemple de type Eppendorf) ou en verre ou en tous autres matériaux... 25 Par « acide nucléique » au sens de la présence invention, on entend un enchaînement d'au moins deux nucléotides, préférentiellement au moins dix nucléotides choisis parmi les quatre types de nucléotides du code génétique, à savoir si l'acide nucléique est un ADN: 30 • le dAMP (désoxyadénosine 5'-monophosphate), • le dGMP (désoxyguanosine 5'-monophosphate), • le dTMP (désoxythymidine 5'-monophosphate), et • le dCMP (désoxycytidine 5'-monophosphate), si l'acide nucléique est un ARN : • l'AMP (adénosine 5'-monophosphate), • le GMP (guanosine 5'-monophosphate), • l'UMP (uridine 5'-monophosphate), et • le CMP (cytidine 5'-monophosphate). L'acide nucléique peut également comprendre éventuellement au moins une inosine et/ou au moins un nucléotide modifié. Le terme « nucléotide modifié » signifie dans la présence invention, un nucléotide par exemple au moins un nucléotide comportant une base nucléique modifiée, la désoxyuridine, la diamino-2,6-purine, la bromo-5-désoxyuridine ou toute autre base modifiée, préférentiellement à l'exception de la 5-méthyl-cytosine. L'acide nucléique peut aussi être modifié au niveau de la liaison internucléotidique comme par exemple les phosphorothioates, les H-phosphonates, les alkyl- phosphonates, au niveau du squelette comme par exemple les alpha-oligonucléotides (FR-A-2.607.507) ou les acides nucléiques polyamides (PMA) (Egholm M. et al. ; J. Am. Chem. Soc. ; 1992 ; 114 ; 1895-97) ou les 2'-O-alkyl-ribonucléotides et/ou un nucléotide 2'-O-fluoro et/ou un nucléotide 2'-amine et/ou un nucléotide arabinose, et les LNA (Sun B.W. et al., Biochemistry ; 2004 ; Apr 13 ; 43 (14) : 4160-69). Parmi les 2'-O-alkyl-ribonucléotides, les 2'-0-méthyl-ribonucléotides sont les préférés, mais on peut également utiliser les 5-Propinyl Pyrimidine Oligonucléotides (Seitz O., Angewandte Chemie International Edition 1999 ; 38(23) ; Dec : 3466-69). Le terme « nucléotide » définit soit un ribonucléotide soit un désoxyribonucléotide. Au sens de la présente invention, on entend par « échantillon biologique » ou « échantillon biologique liquide », tout échantillon susceptible de contenir des acides nucléiques. Ces derniers peuvent être extraits de tissus, de sang, de sérum, de salive, de cellules circulantes d'un patient ou provenir d'un produit alimentaire, agroalimentaire ou encore être d'origine environnementale. L'extraction se fait par tout protocole connu de l'homme du métier, par exemple selon le procédé d'isolation décrit dans lé brevet EPB-0.369.063. Par « contaminant » ou « acide contaminant » ou « acide nucléique contaminant » ou « élément contaminant », on entend au sens de la présente invention, tout acide nucléique dont l'amplification n'est pas désirée et qui est susceptible de générer un résultat faux-positif lors de la détection. Par « amplification » ou « réaction d'amplification » on entend toute technique d'amplification d'acides nucléiques bien connue par l'homme du métier, telle que La PCR (Polymerase Chain Reaction), décrite dans les brevets US-A-4,683,195, US-A-4,683,202 et US-A-4,800,159, et sa dérivée RT-PCR (Reverse Transcription PCR), notamment dans un format en une étape, tel que décrit dans le brevet EP-B-0.569.272. De préférence, la PCR est réalisée sur un seul brin avec un seul couple d'amorce. La LCR (Ligase Chain Reaction), exposée par exemple dans la demande de brevet EP-B-0.201.184, - La RCR (Repair Chain Reaction), décrite dans la demande de brevet WO-A-90/01069, La 3SR (Self Sustained Sequence Replication) avec la demande de brevet WO-A-90/06995, La NASBA (Nucleic Acid Sequence-Based Amplification) avec la 25 demande de brevet WO-A-91/02818, La TMA (Transcription Mediated Amplification) avec le brevet US-5,399,491, et La RCA (Rolling Circle Amplification) décrite dans le brevet US-6,576,448. 30 Au sens de la présente invention, on entend par « cible » ou « acide nucléique cible » ou « cible nucléique » ou « cible d'intérêt » ou « acide nucléique d'intérêt », un acide nucléique (un oligonucléotide, un polynucléotide, un fragment d'acide nucléique, un ARN ribosomique, un ARN messager, un ARN de transfert) à amplifier et/ou à détecter. La cible peut être extraite d'une cellule ou synthétisée par voie chimique. La cible peut être libre en solution ou bien liée à un support solide. Le terme « échantillon liquide et biologique d'intérêt » signifie une solution aqueuse homogène ou hétérogène. Par « support solide », on entend des particules qui peuvent être en latex, en verre (CPG), en silice, en polystyrène, en agarose, en sépharose, en nylon, etc. Ces matériaux peuvent éventuellement permettre le confinement de matière magnétique. Il peut s'agir également d'un filtre, d'un film, d'une membrane ou d'une bandelette. Ces matériaux sont bien connus de l'homme du métier, La cible peut être un acide nucléique viral, bactérien, fongique, ou de levure, présent dans un mélange, sous forme de simple ou double brin d'ADN et/ou d'ARN. En général, la cible est d'une longueur comprise entre 50 et 10000 nucléotides, mais le plus souvent elle est comprise entre 100 et 1000 nucléotides. Par « marqueur », on entend une molécule portée par un nucléotide. Le lien entre le marqueur et le nucléotide peut se faire de différentes façons connues de l'homme du métier. Le couplage manuel se fait par l'utilisation de marqueurs portant un groupement activé, typiquement un carboxyle ou un thiol, qui sont couplés sur un nucléotide interne modifié portant le groupement réactif correspondant (amine ou thiol, par exemple), ou sur une extrémité du brin nucléotidique modifiée avec ces mêmes groupements réactifs. Le couplage automatique se fait par l'utilisation de phosphoramidites portant le marqueur, et alors le couplage se fait pendant la synthèse automatisée du brin nucléotidique, soit sur une extrémité du brin, soit sur une position interne, en fonction du type de phosphoramidite utilisé. Le marqueur peut être un fluorophore ou un extincteur de fluorescence. Par « fluorophore », on entend une molécule qui émet un signal de fluorescence quand elle est excitée par de la lumière à une longueur d'onde qui convient. Le fluorophore peut être notamment une rhodamine ou un dérivé tel que Texas Red, une fluorescéine ou un dérivé (par exemple le FAM), un fluorophore de la famille des Alexa tels que l'Alexa532 et l'Alexa647, Alexa 405, Alexa 700, Alexa 680, Cy5 ou tout autre fluorophore qui convienne en fonction de l'appareil de mesure utilisé. Les fluorophores disponibles pour les sondes de détection sont très variés et connus de l'homme du métier. Au sens de la présente invention, on entend par « fluorescéine » une molécule chimique aromatique qui émet un signal de fluorescence avec un maximum d'émission autour de 530 nm, quand elle est excitée par de la lumière à une longueur d'onde aux alentours de 490 à 500 nm, préférentiellement de 495 nm. Par « extincteur de fluorescence » ou « quencher », on entend une molécule qui interfère avec la fluorescence émise par un fluorophore. Cet extincteur peut être choisi parmi des molécules aromatiques non fluorescentes, pour éviter des émissions parasites. Préférentiellement, le dit extincteur est un Dabsyl ou un Dabcyl ou un « Black hole quencherTM » (BHQ) qui sont des molécules aromatiques non fluorescentes qui empêchent l'émission de fluorescence quand elles se trouvent physiquement à proximité d'un fluorophore. La technique de transfert d'énergie de fluorescence par résonance (FRET) peut également être utilisée tel que décrit par exemple dans Fluorescent Energy Transfer Nucleic Acid Probes, p. 4, Ed. V.V. Didenko, Humana Press 2006, ISSN 1064-3745. Le quencher peut également être choisi parmi des molécules fluorescentes, telles que par exemple la TAMRA (carb_oxytetramethylrhodamine). La « sonde de détection trois bases » ou « sonde trois bases », dite S3B, est une sonde telle que définie précédemment et qui en plus des précédentes caractéristiques est constituée d'un enchaînement nucléotidique de trois types de bases différentes choisies parmi le groupe d'adénine, thymine, guanine, cytosine. Il est bien compris par l'homme du métier que suivant la forme des sondes (Molecular Beacon, voir EP95/904 104.7, EP96/303 544.9 et EP97/923 412.7, ou 0-probe, voir PCT/FR2009/051315, etc.), la sonde sera constituée d'une partie d'une séquence dont l'enchaînement nucléotidique sera composé de nucléotides de quatre types de bases différentes et d'une séquence dont l'enchaînement nucléotidique sera composé de nucléotides de trois types de bases différentes (séquence permettant l'hybridation et la détection des amplicons). Dans certains cas, pour améliorer l'hybridation avec les amplicons et donc leur détection, les sondes selon l'invention peuvent ponctuellement contenir de l'uracile à la place de la thymine. Dans ce cas, les sondes selon l'invention seront constituées d'un enchaînement nucléotidique de quatre types de bases différentes (uracile, guanine, adénine, thymine). Par « hybridation », on entend le processus au cours duquel, dans des conditions appropriées, deux fragments nucléotidiques simple brin, ayant en tout ou partie des séquences complémentaires, sont susceptibles de former un double brin ou « duplex » stabilisé par des liaisons hydrogènes entre les bases nucléiques. Les conditions d'hybridation sont déterminées par la stringence, c'est-à-dire la rigueur et la faible salinité des conditions opératoires. L'hybridation est d'autant plus spécifique qu'elle est effectuée à plus forte stringence. La stringence est définie notamment en fonction de la composition en bases d'un duplex sonde/cible, ainsi que par le degré de mésappariement entre deux acides nucléiques. La stringence peut également être fonction des paramètres de la réaction, tels que la concentration et le type d'espèces ioniques présentes dans la solution d'hybridation, la nature et la concentration d'agents dénaturants et/ou la température d'hybridation. La stringence des conditions dans lesquelles une réaction d'hybridation doit être réalisée dépendra principalement des sondes d'hybridation utilisées. Toutes ces données sont bien connues et les conditions appropriées peuvent être déterminées par l'homme du métier. Les exemples et figures ci-joints représentent des modes particuliers de réalisation et ne peuvent pas être considérés comme limitant la portée de la présente invention. La figure 1 représente un premier mode de réalisation du dispositif jetable selon l'invention, qui contient un seul et unique canal fluidique. Dans cette configuration particulière, le dispositif est prêt pour aspirer un échantillon biologique à traiter dans lequel au moins un acide nucléique cible est susceptible d'être présent. La figure 2 représente encore ce premier mode de réalisation, mais dans une autre configuration particulière, dans laquelle le dispositif est en train d'aspirer l'échantillon biologique à traiter (non représenté sur cette figure). La figure 3 représente un deuxième mode de réalisation du dispositif jetable selon l'invention, qui contient deux canaux fluidiques en parallèle. Dans cette configuration particulière, le dispositif est prêt pour aspirer ledit échantillon biologique contenant au moins un acide nucléique cible, susceptible d'être présent. La figure 4 représente également ce deuxième mode de réalisation, mais dans une autre configuration particulière, dans laquelle le dispositif est en train d'aspirer l'échantillon biologique à traiter (non représenté sur cette figure). La figure 5 représente un troisième mode de réalisation du dispositif jetable selon l'invention, qui contient huit canaux fluidiques en parallèle. Dans cette configuration particulière, le dispositif est prêt pour aspirer ledit échantillon biologique contenant au moins un acide nucléique cible, susceptible d'être présent. La figure 6 représente une coupe selon A-A de la figure 5 permettant de mieux visualiser la manière dont les actions d'aspiration et de refoulement sont réalisées au sein dudit 10 dispositif. Enfin les figures 7 à 10 montrent le dispositif selon une variante du deuxième mode de réalisation, mais en cours d'utilisation : • la figure 7 : Le dispositif jetable ne contient pas 15 l'échantillon liquide d'intérêt. Son embout est juste en contact avec celui-ci qui est présent dans un contenant. • la figure 8 L'embout étant en contact avec l'échantillon, les pistons sont déplacés pour permettre l'aspiration de l'échantillon d'intérêt au sein du 20 dispositif jetable. Dans ce cas l'échantillon se retrouve au niveau du premier compartiment et des constituants thermostables qu'il contient. Avant que les pistons aient terminé leur aspiration au niveau de cette phase, le dispositif jetable est monté et/ou le contenant est 25 baissé, afin que dispositif et échantillon dudit contenant ne soient plus en contact et que le canal unique ne soit rempli plus que d'air, comme c'est le cas sur cette figure 8. Les deux canaux aval, contenant chacun une colonne liquide d'un aliquote de l'échantillon. Préférentiellement 30 l'aspiration par les pistons est stoppée lorsque l'on retire le dispositif par rapport à l'échantillon restant présent au niveau du contenant. • la figure 9 : L'aspiration de l'échantillon d'intérêt par lesdits pistons continue et ledit échantillon est déplacé vers le moyen de mélange, où des mouvements de va-et vient permettent le bon mixage de l'échantillon et des constituants thermostables. L'ensemble échantillon associé aux constituants thermostables est par la suite toujours appelé « échantillon » pour des raisons de facilité de lecture et de compréhension. • la figure 10 : Les pistons sont déplacés pour permettre l'aspiration de l'échantillon d'intérêt au sein du dispositif jetable. Dans ce cas l'échantillon se retrouve au niveau du second compartiment et des constituants non-thermostables qu'il contient. • la figure 11 : Il n'y a plus d'aspiration, mais un refoulement de l'échantillon d'intérêt par lesdits pistons et ledit échantillon est déplacé vers le moyen de mélange, où des mouvements de va-et-vient permettent le bon mixage de l'échantillon et des constituants non-thermostables. Encore une fois l'ensemble échantillon associé aux constituants thermostables et non-thermostables est par la suite toujours appelé « échantillon » pour des raisons de facilité de lecture et de compréhension. • la figure 12 Les pistons sont déplacés pour permettre l'aspiration de l'échantillon d'intérêt au sein du dispositif jetable. Dans ce cas l'échantillon se retrouve au niveau du troisième compartiment et des constituants nécessaires à la détection qu'il contient. La figure 13 présente des courbes d'amplification NASBA pour l'état de la technique (EasyQ) selon des valeurs croissantes de la quantité de cible (voir échelle de 0 à 10000 en position haute - voir référence à la flèche B). Les courbes correspondantes à l'amplification de la séquence cible HIV sont tracées en position inférieure (voir référence à la flèche A), les courbes correspondantes au calibrateur sont en position supérieure. La figure 14 représente des courbes d'amplification NASBA pour l'invention dans les mêmes conditions que celles appliquées à la figure 13 (de même pour l'utilisation des flèches A et B). A noter que pour améliorer la lisibilité sur cette figure, les courbes correspondantes à la cible HIV ont été dilatées d'un facteur 5. Ainsi avec le dispositif selon la présente invention, les courbes correspondantes à la cible (HIV) varient de 8 à 40 rfu (Relative Fluorescence Unit) environ. Les courbes du calibrateur variant de 50 à 250, le graphe n'est pas lisible si on met les deux courbes avec la même échelle. Ainsi fait, les courbes HIV varient entre 40 et 200 et sont donc plus lisibles. Enfin ce sont des valeurs relatives qui ne préjugent pas de l'efficacité de l'amplification, c'est en fait les points d'inflexion de chaque courbe qui, eux ont une valeur d'interprétation. La figure 15 propose la quantification variable calculée par l'algorithme HIV v.2.0 pour les instruments EasyQ (à gauche) et selon l'invention (à droite). La figure 16 a trait au résultat de quantification en 20 fonction de la quantité de cible. Enfin la figure 17 représente une coupe longitudinale selon B-B de la figure 2 du dispositif selon l'invention. La présente invention est bien représentée sur l'ensemble 25 des figures 1 à 17. Trois modes de réalisation sont plus particulièrement représentés. Un premier mode de réalisation présenté aux figures 1 et 2 représente un mode tout à fait simple de réalisation de la 30 présente invention. Il est constitué d'un dispositif jetable à qui est formé d'un corps solide 2 dans lequel est gravé en surface un circuit ou canal fluidique 3. Bien entendu ce circuit fluidique 3 est délimité par un film de type BOPP (Bi-Oriented PolyPropylen), non référencé sur ces deux figures, mais présent avec la référence 14 en figure 17, qui empêche l'échantillon liquide de sortir dudit circuit 3. Le canal fluidique 3 comporte d'une part un trou débouchant 4, appelé entrée, situé en bas de chaque figure et un autre trou débouchant, dit sortie, situé en haut de chaque figure, ce qui permet au canal 3 d'avoir deux ouvertures sur l'extérieur. En fait l'entrée 4 est formée par un embout de pipette, référencé 16, c'est-à-dire moulé d'une seule pièce avec l'ensemble du corps 2. Sur la figure 1 en embout de pipette rapporté 27 est représenté, montrant un mode de réalisation particulier utilisant un embout conventionnel. De l'autre côté, la sortie 5 est présente au sein d'un cylindre 17, qui constitue une des parties du moyen d'aspiration refoulement 7. L'autre partie de ce moyen d'aspiration refoulement 7 est constituée par un piston 18 qui peut coulisser, au sein du cylindre 17, mû par un actionneur, non représenté ici, selon la flèche F1, d'une part, qui est un mouvement du piston 18 dans le cylindre 19 dans lequel le volume de fluide au sein du circuit fluide 3 diminue, ou selon la flèche F2, qui est un mouvement du piston 18 dans le cylindre 19 qui est totalement différent du précédent, c'est-à-dire qu'il augmente le volume de fluide au sein du circuit fluidique 3. L'actionneur peut agir sur le piston par l'intermédiaire d'un moyen de liaison 21. Ce système est particulièrement intéressent dans le cas ou l'on souhaite automatiser l'ensemble du système. Sur ce mode de réalisation des figures 1 et 2, on note que le circuit fluidique est relativement simple puisqu'il comprend le long du canal 3, de section sensiblement constante, un premier compartiment 8, un second compartiment 9 et, entre les deux 8 et 9, un moyen de mélange 15 constitué d'un ensemble de chicanes 19. Les rôles de ces compartiments 8 et 9 et de ce moyen de mélange 15 seront exposés plus avant ultérieurement. Le deuxième mode de réalisation est représenté aux figures 3 et 4. Il s'agit d'un mode de réalisation sensiblement identique au précédent, mais dans lequel deux canaux fluidiques qui sont en parallèle l'un de l'autre sont représentés. Ce dispositif est référencé 100 même si l'ensemble des autres éléments reprend les mêmes numéros de références que ceux précédemment utilisés. La figure 3 est sensiblement identique à la figure 1 du fait que le piston 18 est en position de repos, c'est-à-dire qu'il est en position basse au sein du cylindre 17 et que l'actionneur ou le manipulateur déplace ledit piston 18 par l'intermédiaire du moyen de liaison 21. Dans ce mode de réalisation il y a donc une entrée 4, un unique canal 3 sur la partie avale, qui se scinde ensuite en deux canaux de section identique qui vont remonter parallèlement le long du corps 2 du dispositif 100. Le long de chacun des canaux 3, on va donc trouver comme c'était le cas précédemment un premier compartiment 8, un moyen de mélange 15 et un deuxième compartiment 9. Mais en plus, il y a en amont un troisième compartiment 10. Pour des raisons pratiques, 'un siphon est formé entre le deuxième et troisième compartiments 9 et 10, à savoir que le premier coude du siphon est situé au-dessus du premier compartiment 9 et que le troisième compartiment 10 est situé au niveau du deuxième coude du siphon. Alternativement, le compartiment 10 peut être supprimé et la lecture effectuée directement dans le compartiment 9. Le rôle du compartiment 9 ou 10 est tout d'abord de sécuriser tout déplacement non désiré du liquide vers la partie basse de la carte, ladite carte étant utilisée en position verticale, et ensuite, d'augmenter le volume de liquide utilisable pour la détection en fluorescence en maximisant le diamètre de l'opercule de lecture, réalisé dans le bloc chauffant associé dans l'instrument et positionner en vis-à-vis du compartiment 9 ou 10. Une autre caractéristique de ce mode de réalisation est que pour une entrée 4, il y a deux sorties 5 puisque chaque canal 3 est connecté en amont à un moyen d'aspiration refoulement 7. Donc chaque canal 3 est associé à un cylindre 17 et à un piston 18. Dans ce mode de réalisation particulier les deux pistons 18 sont indépendants l'un de l'autre, comme on le voit bien à la figure 4, c'est-à-dire qu'on peut les actionner selon Fl et F2 de manière indépendante l'un de l'autre. La configuration à deux pistons individualisés, à mouvement indépendant l'un de l'autre, permet de corriger le défaut de positionnement des segments liquides dans chaque canal fluidique individuellement, notamment par un recalage desdits segments dans la zone de détection, par exemple, le décalage pouvant être dû à un échantillon à visqueux non homogène, à un léger défaut de moulage dans le circuit fluidique de la carte ou un déplacement non désiré par le fait d'un gradient thermique entraînant momentanément un différentiel de pression de part et d'autre du segment fluidique. Ceci permet donc d'augmenter la robustesse de fonctionnement du dispositif. Ce système fonctionne dès qu'il y a plus d'une voie et ce, à l'aide de capteurs de position placés à des endroits adéquates, d'une part au sein du dispositif, et d'autre part par rapport à la carte selon l'invention. A noter qu'il est particulièrement intéressant d'avoir un système anti-extraction de chaque piston 18. Ainsi et avantageusement, chaque piston 18 peut être muni d'un guide 23 qui est relié par une extrémité à l'extrémité supérieure de la bielle du piston 18 et à son autre extrémité, non représentée sur les figures, à une forme de plus grande section interdisant l'extraction accidentelle du piston post-amplification lors de la manipulation par l'opérateur (ex : déchargement du consommable de l'instrument en fin d'analyse, ou erreur de positionnement des pistons par l'instrument). Ce système antiextraction est bien entendu adaptable à tous les modes de réalisation envisagés par la présente invention. Les figures 5 et 6 représentent un troisième mode de réalisation qui est sensiblement identique au précédent, sauf en ce qu'il comporte en parallèle huit canaux fluidiques 3. Comme pour les deux précédents modes de réalisation, il n'y a qu'une entrée 4 située au niveau d'un embout 16 duquel part un seul canal 3. Celui-ci se divise en 2 à 3 reprises ce qui donne un nombre total de huit canaux 3 au niveau de la partie active du dispositif 200 et donc huit sorties 5. Chaque canal 3 est alors constitué de : • un premier compartiment 8 suivi d'un moyen de mélange 15 composé d'un certain nombre de chicanes 19, • un deuxième compartiment 9, et enfin • un troisième compartiment 10. Chaque canal aboutit bien entendu à un moyen d'aspiration refoulement 7 constitué, comme à l'accoutumée, par un cylindre 17 et un piston 18. De la même manière que le second mode de réalisation, ce troisième mode de réalisation comporte des pistons 18 qui sont manipulables par l'intermédiaire du moyen de liaison 21 de manière autonome et indépendante par rapport aux autres pistons 18 adjacents. Sur la figure 6 est représentée une coupe longitudinale selon l'axe A-A, de la figure 5, qui permet de mieux visualiser la connexion qui existe entre le canal 3 et le moyen d'aspiration refoulement 7. Cette coupe permet de voir le corps 2 du dispositif 200, qui comporte sur sa surface supérieure un canal 3 délimité par rapport à l'extérieur à l'aide d'un film de cloisonnement 14 fabriqué en une matière adéquate. Le film est préférentiellement en BOPP (Bi-oriented PolyPropylene) avec une colle silicone, mais peut également être réalisé en PP (PolyPropylene), PET (PolyEthylen Terephtalate), TPE (ThermoPlastic Elastomer), en film complexes type PP/PE pouvant être scellé par procédé laser autour des canaux fluidiques. Ce canal 3 aboutit à un trou transversal 25 qui débouche au sein du cylindre 17. Au sein de ce cylindre 17 est présent le piston 18 dont la tête de piston 26 forme un joint d'étanchéité avec la chemise dudit cylindre 17. La tête du piston 26 peut être composée de deux pièces (corps avec gorge et joint torique élastomère) ou être constituée d'un piston monobloc, en une seule pièce, simplifiant les opérations d'assemblage de la carte et permettant de diminuer le coût par test. Il est donc bien évident que lorsque l'actionneur ou le manipulateur exerce une force, selon F2 sur le piston 18, celui-ci va permettre l'aspiration du fluide gazeux ou liquide présent dans le canal 3, alors que l'action selon F1 va permettre de faire ressortir ce fluide par l'intermédiaire de la sortie 4, non représenté sur la figure 6. Il existe deux manières différentes de réalisation de pistons intégrés. Il peut s'agir d'un simple piston avec ou sans segment (« o-ring » en anglais), comme c'est le cas ci-dessus, ou bien un piston à double section. Bien que ce type de piston soit bien connu de l'homme du métier, les avantages d'utilisation d'un piston à double section sont les suivants : La précision de positionnement intrinsèque est améliorée par rapport à un simple piston (ayant le même diamètre) car le volume de liquide pompé est déterminé/calibré par la différence de volume entre les deux sections dudit piston (l'aspiration est donc localisée entre les deux diamètres de ce piston). Après l'action de pompage, le piston est complètement poussé dans la chemise/cartouche où il est mû. De ce fait, il n'y a aucun risqué que le piston soit extrait par Inadvertance par l'utilisateur. Les figures 7 à 14 montrent le deuxième mode de réalisation des figures 3 et 4 lors de l'utilisation du dispositif 100. Il est à noter que ce dispositif 100 est très légèrement différent de celui déjà exposé puisque les deux pistons sont, dans le cas présent, solidarisés l'un par rapport à l'autre afin que le mouvement fluidique dans chacun des deux des besoins. deux pistons soit déformable sans physiquement. Sur la figure 7 on note que l'échantillon liquide et biologique 6 est compris dans un contenant 20 uniquement bien que celui-ci 6 soit en contact avec le dispositif 100 ; notamment l'embout 16 est partiellement immergé dans ledit liquide 6. Pour sa part, le dispositif 100 comporte en plus de ce qui a été représenté aux figures 3 et 4 des constituants thermostables 12 présents au sein du premier compartiment 8 et des constituants non thermostables 13 au sein du deuxième compartiment 9. En fait les constituants sont stockés sous forme solide, par exemple selon les informations techniques révélées dans le brevet EP-B-0.641.389, auquel le lecteur est prié de se référer pour avoir plus de précisions sur ce sujet. Il est bien évident que l'on peut imaginer qu'il n'y ait que deux compartiments 8 et 9, comme c'est le cas sur les figures 1 et 2. Dans ce cas, il est nécessaire d'avoir des constituants non thermostables et de détection 13 et 14 qui sont présents ensemble dans le second compartiment 9. De même si l'on utilise une amplification n'ayant que des constituants thermostables, il est également possible d'avoir tous les ingrédients présents dans un seul compartiment, notamment 8 ou 9. Préférentiellement l'embout est assorti d'un cône de pipetage 27, tel que représenté à la figure 1, par exemple de 50 à 200 pL de capacité ou bien, et ceci n'est pas représenté sur les figures mais est bien connu de l'homme du métier, d'une paille en polyéthylène pouvant être scellée thermiquement, après réalisation de l'ensemble des séquences fluidiques dans la carte. Dans la figure 7, soit le contenant de l'échantillon canaux 3 soit identique. Il s'agit bien entendu d'une option et l'on peut prévoir que les pistons puissent être désolidarisés l'un par rapport à l'autre, soit automatiquement par l'automate, soit manuellement par le manipulateur en fonction Il est également possible que le pont reliant les pour autant être coupé biologique peut monter au contact de l'embout, soit ce sera la carte qui sera déplacée par l'instrument pour venir en contact avec le liquide contenu dans le contenant, ce dernier cas correspondant au cas des architectures pour les machines à haute cadence. Le dispositif sera alors utilisé comme un cône de pipetage classique et sera donc déplacer selon les axes X, Y et/ou Z par un robot pour aller prélever dans le ou lés contenants. Sur la figure 8, le moyen de liaison 21 est mû selon F2, afin que les pistons 18 aspirent l'échantillon liquide présent dans le contenant 20 au sein de la carte. A la fin de cette étape, non représenté sur cette figure, le dispositif 100 a été relevé alors que les pistons 18 continuent leur aspiration, ce qui explique la présence de deux colonnes de liquide dans chacun des canaux 3. A noter que le volume aspiré est lié à la section du piston intégré dans la carte et à la longueur de déplacement du piston. Outre l'éventuel arrêt initial au niveau du cône de pipette, le premier arrêt de chaque échantillon liquide 6 se fait au niveau du premier compartiment 8, c'est-à-dire au niveau des constituants thermostables 12, ce qui permet de diluer lesdits constituants qui sont stockés en fait sous forme lyophilisée ou séchée, comme c'est le cas pour les autres constituants 9 et 10. Le segment liquide est maintenu sur la position du réactif afin de faciliter la remise en suspension du réactif séché ou lyophilisé, typiquement dix secondes, généralement moins d'une minute. Selon la figure 9 maintenant, le mouvement du fluide continue selon F4 en direction du moyen de mélange 15. Ce mouvement selon F4 correspond à l'aspiration selon F2 du piston. Lorsque le mélange 6+12 a atteint les chicanes 19 un mouvement de va-et-vient selon F3 et F4 est généré par un mouvement des pistons selon F1 et F2, afin de permettre un passage plus ou moins rapide et ce à de multiples occasions dudit mélange au sein du moyen de mélange 15. Typiquement le nombre d'aller-retour de mélange dans la carte est compris entre un et dix aller-retours, typiquement cinq aller-retours pour garantir une homogénéisation satisfaisante des composés de la réaction. Les changements de direction dus à la présence des chicanes 19 permettent ainsi un bon mélange des constituants dilués, dit constituants thermostables 12, au sein de l'échantillon liquide d'intérêt 6. Par constituants thermostables 12, on entend notamment les amorces d'amplification, la ou les sondes de détection, les nucléotides et tous autres ingrédients thermostables nécessaires à l'élongation des amorces lors de l'amplification. Sur la figure 9 on note qu'il existe une première zone destinée au chauffage 11 représentée par des pointillés. Cette zone représente symboliquement l'endroit où le manipulateur ou bien l'automate va venir appliquer une source de chaleur afin de procéder au traitement de l'échantillon liquide 6+12, c'est-à-dire de l'échantillon 6 en présence des constituants thermostables 12, afin de débuter une technique d'amplification, telle que la NASBA. Lorsque ceci est réalisé, la figure 10 montre que l'aspiration selon F2 continue, afin que les colonnes de liquide remontent jusqu'au second compartiment 9 ou les constituants non thermostables 13 soient à leur tour dilués. Ce mouvement selon F4 est toujours dû à la montée des pistons selon F2. Par constituants non-thermostables, on entend essentiellement les enzymes nécessaires à l'amplification. Il s'agit notamment dans le cadre d'une amplification posttranscriptionnelle de l'AMV-RT (Avian Myeloblastosis Virus- Reverse Transcriptase), la RNase H et la polymérase T7 (DNA dependent RNA polymerase). Pour toutes les étapes de déplacement du liquide, le débit est typiquement de 1 pL par seconde. Avantageusement, un capteur optique de l'instrument, non représenté sur les figures, positionné deux millimètres environ avant chaque réactif, embarqué dans la carte, permet de détecter la présence des segments liquides et ainsi de garantir une robustesse suffisante de fonctionnement en compensant les effets liés à la différence de chaque échantillon. Alternativement, l'utilisation des capteurs optiques permet également de mesurer la longueur du segment liquide et donc de vérifier la précision de la division liquide effectuée lors de l'étape d'aspiration et chargement de l'échantillon dans la carte. Sur la figure 11 maintenant, chaque colonne de liquide est ensuite redescendue selon F1 au niveau du moyen de mélange 15. A ce niveau l'ensemble du mélange 6+12+13 est également mû selon F3 et F4, afin que les chicanes 19 permettent un mélange approprié des constituants thermostables 12 et non thermostables 13 au sein de l'échantillon 6. L'arrivée dans les chambres peut être avantageusement détectée par la tête de lecture en fluorescence intégrée dans l'instrument pour réalisée la mesure en temps réelle de la réaction d'amplification. La figure 11 montre, à l'instar de la figure 9, une seconde zone destinée au chauffage 22 qui permet, elle aussi, de procéder à l'amplification NASBA. Sur la figure 12 enfin, l'aspiration selon F2 permet aux colonnes de liquide 6+12+13 de remonter jusqu'au troisième compartiment 10, qui fait alors office de zone de lecture. Il est à noter que cette zone de lecture peut être soit le premier 8, soit le deuxième 9, soit le troisième compartiment 10. Dans le cas présent, le troisième compartiment 10 fait office de zone tampon pour empêcher toute remontée inappropriée de liquide vers le haut du dispositif, cette action est renforcée par la fermeture de la vanne 27. Si par contre le troisième compartiment 10 fait office de zone de lecture, l'aspiration selon F2 est plus importante ce qui permet aux colonnes de liquide 6+12+13 de remonter jusqu'audit troisième compartiment 10, où la lecture peut avoir lieu. Toujours selon un autre mode de réalisation, il est possible de prévoir que les constituants thermostables 12 sont scindés en deux sphères, dites « pellets » en anglais. Une première sphère, présente dans le premier compartiment 8, contenant les amorces d'amplification, les nucléotides et tout autre ingrédient thermostable nécessaire à permettre l'élongation des amorces lors de l'amplification. Une seconde sphère, présente dans le troisième compartiment 10, contenant la ou les sondes de détection nécessaires à la détection des amplicons, après l'étape d'amplification. Dans ce le mélange, devra retourner au niveau du moyen de mélange 15, au sein duquel l'ensemble du mélange est toujours mû selon F3 et F4, afin que les chicanes 19 permettent un mélange approprié des constituants thermostables 12 et non thermostables 13 au sein de l'échantillon 6. La lecture pouvant s'effectuer dans n'importe lequel des compartiments 8, 9 ou 10. Une dernière étape existe, non représentée sur les figures, qui consiste, immédiatement après le fin du positionnement dans le troisième compartiment, à fermer la vanne 27 à l'aide d'un actionneur intégré dans l'instrument. Alternativement, ladite vanne peut être supprimée et remplacée par une paille, comme évoqué plus haut, qui peut être scellée, par exemple à la chaleur, vanne qui aura alors deux fonctions, tout d'abord de pipetage dans le contenant de l'échantillon et ensuite de fermeture par utilisation d'un fil chauffant au sein de l'instrument associé. EXEMPLE : Cet exemple montre les performances de quantification obtenues avec un dispositif jetable selon le deuxième mode de réalisation de l'invention, à savoir la carte avec deux canaux fluidiques en parallèle (voir figures 3 et 4). Les tests ont été réalisés en utilisant comme cible le Virus d' Immunodéficience Humaine (VIH). Notre invention a été comparée à un produit déjà commercialisé, appelé Nuclisens EasyQ analyzer (Réf. 285060, bioMérieux S.A., Marcy, l'Etoile, France), en utilisant les mêmes échantillons biologiques, contenant des cibles synthétiques VIH. 1 - Préparation des cibles : Les transcrits ont été introduit dans les deux appareils Nuclisens EasyQ et selon l'invention. Il n'y a pas d'étape de préparation d'échantillon, comme par exemple l'extraction. 2 - Matérial et méthodes : Les expérimentations sur EasyQ ont été réalisées en utilisant le kit bioMérieux HIV2.0 (ci-après appelé PVB1) (Réf. 285033, bioMérieux B.V., Boxtel, Pays-Bas), en suivant les instructions d'utilisation. Celui-ci contient : • un mélange d'enzymes : une sphère d'enzymes, ci-après appelé ENZ (N° de lot : 83281SXX + 45 }iL diluant d'enzymes (83301AXX), et • un mélange d'amorces et de sondes, appelé par la suite P/B : il y a en fait deux sphères P/B (N° de lot : 83283SXX), auxquelles sont ajoutés 180 pL de diluant pour P/B 2X (83272AXX). Ceci donne un mélange NASBA avec 5 pL de mélange ENZ et 20 pL de mélange P/B + 15 uL de cibles. Le dispositif jetable selon l'invention est complètement automatisé pour permettre l'amplification et la détection. Il permet de réaliser le prélèvement de l'échantillon biologique à tester, contenant les cibles. Le protocole expérimental du dispositif selon l'invention est défini pour que les réactifs (amorces, sondes et enzymes notamment) aient une même concentration que dans le protocole EasyQ. Néanmoins le volume par test utilise dans notre invention est de 5 pL au lieu de 40 pL avec EasyQ. La quantité de réactifs est donc divisée par huit. Les réactifs provenant du kit PVB1 ont été lyophilisés et mis dans le dispositif selon l'invention. Le banc de lyophilisation est associé avec un robot pipetteur Hamilton (Réf. 202997, Bonaduz, Suisse) qui autorise le dépôt reproductible de gouttelettes de 1 pL pour P/B et de 1,25 pL pour ENZ dans les compartiments dédiés du dispositif inventif. L'instrument d'amplification et de détection utilisé avec l'invention exécute toutes les fonctions nécessaires pour obtenir une courbe d'amplification, c'est-à-dire aspiration de l'échantillon, mélange des réactifs, chauffage et lecture de fluorescence. Ce concept supprime la plupart des étapes manuelles obligatoires avec EasyQ. Le tableau 1 suivant présente les principales différences 25 existantes entre EasyQ et l'invention. EasyQ Invention Volume 40 pL 5 pL P/B 20 pL 1 pL (incorporé) ENZ 5 pL 1,25 pL (incorporé) Volume 15 pL 5 pL d'échantillon utilisé Etapes • diluer les accusphères, charger le tube manuelles • et • ajouter amorces dans l'analyser et sondes à l'éluat, démarrer. transférer vers l'incubateur, • ajouter la solution d'enzymes dans le bouchon, • fermer le tube avec le bouchon • centrifuger, • passer au vortex, • centrifuger encore, • charger le tube dans l'analyser et démarrer. Nombre de Jusqu'à 48 tests 2 avec le tests/série dispositif proposé Tableau 1 : Comparaison des données techniques et du procédé mis en oeuvre par le dispositif de l'état de la technique (EasyQ) et par l'invention Comme dit précédemment, l'échantillon biologique utilise pour cette étude contient des cibles VIH. Cet échantillon est ensuite dilué pour les expériences sur EasyQ et l'invention, mais ce sont les mêmes séries de dilution qui sont utilisées. 10 Le tableau 2 ci-dessous montre le nombre de cibles VIH par tests ainsi que le nombre d'expériences réalisées avec chacun des deux dispositifs (EasyQ et invention). Le nombre de copies « équivalent » pré-extraction correspond au nombre de copies qu'il faudrait en amont d'une étape d'extraction pour obtenir 15 le nombre de copies par test (c'est-à-dire « équivalent » pré-extraction égal nombre de copies par test divisé par le rendement d'extraction). Nombre de copies de 0 3.75 7.5 15 22.5 30 300 3000 la cible par test (EasyQ et invention) Nombre de copies de 0 12.5 25 50 75 100 1000 10000 « Equivalent » pré- extraction par test Nombre de réplicats 15 12 12 _ 12 15 15 15 avec EasyQ 15 Nombre de réplicats 8 8 8 4 4 4 4 4 l'invention Tableau 2 : Nombre de cibles VIH par tests ainsi que le nombre d'expériences réalisées avec chacun des deux dispositifs (EasyQ et invention) Par « réplicat », on entend le nombre de fois que le test a été réalisé en parallèle à partir du même échantillon de départ. Le nombre de copies à usage de contrôle interne est de 290 par test, aussi bien pour EasyQ que pour l'invention. Il faut noter que l'invention, dans le cas présent, n'autorise que deux tests en parallèle, de ce fait nombre de réplicats est considérablement plus bas avec notre invention qu'avec EasyQ. La limite de détection revendiquée pour EasyQ est de 25 copies 15 (équivalent préextraction), ce qui correspond à 7,5 copies par test. Les données acquises avec EasyQ ont été traitées avec le logiciel EasyQ Director software (BioMérieux S.A., La Balme, 20 France), utilisant le protocole du test HIV-lDB 2.0 (Réf. 285033, bioMérieux B.V., Boxtel, Pays-Bas). Chaque courbe d'amplification, mesurée avec l'instrument utilisant l'invention, ,a été traitée par utilisation d'un outil interne nommé EDrecalc recalculation portant sur l'algorithme de 25 calcul et d'interprétation des courbes d'amplification, qui est inclus dans le logiciel commercial EasyQ Director cité ci-dessus, avec le même algorithme que celui utilisé par le logiciel EasyQ Director et le protocole du test HIV-lDB 2.0. 30 3 - Résultats : Les courbes de fluorescence brutes sont présentées sur la figure 13 pour le dispositif selon l'état de la technique (EasyQ) et sur la figure 14 pour l'invention. Les courbes d'amplification obtenues avec l'invention sont très similaires à celles obtenues avec EasyQ. On peut observer une large distribution des valeurs de fluorescence pour le plateau de fluorescence du signal issu du calibrateur. Comme cette distribution existe avec chaque instrument, cette propagation n'est pas liée à l'instrumentation. 3.1 ù Limite de détection : Du fait du petit nombre de réplicats, il n'est pas possible de déterminer la limite de détection avec un intervalle de confiance étroit. Ainsi, dans le tableau 3 ci-dessous, nous avons seulement comparé le nombre de résultats positifs obtenus avec les deux instruments pour quelques valeurs de nombre de copies extraites du tableau 2 : Valeurs d'entrée (pré- 0 12.5 25 50 75 extraction « équivalent » copies par test) EasyQ 0/15 6/12 12/12 14/15 12/12 Nombre de positifs / nombre d'expériences Invention 0/8 5/8 8/8 4/4 4/4 Nombre de positifs / nombre d'expériences Tableau 3 : Limite de détection avec chacun des deux dispositifs (EasyQ et invention) La limite de détection revendiquée pour le test NucliSENS HIV 2.0 est de 25 copies (limite de détection à 95% de positifs). Avec cette valeur d'entrée, tous les tests réalisés avec le dispositif selon l'invention sont positifs. Avec 12,5 copies, environ 50% des tests sont positifs avec EasyQ et légèrement plus avec l'invention. On peut donc légitimement considérer que notre invention a des résultats au moins similaire à la limite de détection de l'état de la technique, EasyQ. 3.2 - Performances de la quantification : La figure 15 présente le Qratio (variable dé quantification) en fonction du nombre de copies en entrée. La répartition des points correspondant aux données est similaire pour les deux instruments. En utilisant les paramètres liés au lot de réactifs, un homme du métier peut obtenir par calcul le nombre de copies, dont la moyenne est tracé en échelle logarithmique sur la figure 16. Les tableaux 4 et 5 suivants montrent les performances de la qualification associées à ces deux instruments Données log(entrée) moyenne précision justesse d'entrée 25 1, 40 1, 31 0, 19 0, 09 50 1,70 1,40 0,20 0,30 75 1,88 1,64 0,19 0,24 100 2,00 1,70 0,23 0,30 1000 3,00 2,75 0,14 0,25 10000 4,00 3,83 0,07 0,17 Tableau 4 : Performances de la qualification pour EasyQ Données log(entrée) moyenne précision justesse d'entrée 25 1,40 1,47 0,18 0,07 50 1, 70 1, 34 0, 33 0, 36 75 1, 88 1, 77 0, 05 0, 11 100 2,00 1,82 0,34 0,18 1000 3,00 2,89 0,21 0,11 10000 4,00 3,84 0,13 0,16 Tableau 5 : Performances de la qualification pour l'invention D'après les spécifications de haut niveau du test HIV2.0, la précision, c'est-à-dire l'écart type des résultats de différents réplicats, doit être inférieure à 0,3 log. Certaines valeurs de précision pour les données du prototype d'instrument associé au dispositif sont au-dessus de cette spécification. Ceci peut être dû au faible nombre de réplicats qui ne permet pas de donner une estimation correcte de la précision. Le prototype respecte bien la spécification sur la justesse (c'est-à-dire la différence entre le résultat et le nombre de copies en entrée du test) est de 0,25. La linéarité pour l'invention est la même que pour EasyQ mais nécessite d'être mesurée au-delà des 104 copies de cette étude. 4 - Conclusion : La présente invention, dans sa configuration à deux canaux fluidiques parallèles a été utilisée pour détecter des cibles HIV par l'intermédiaire du kit HIV v.2.0. Les résultats ont été comparés avec l'analyseur EasyQ, qui a servi de référence. Les performances de l'invention sont en ligne avec les plus importantes contraintes nécessaires à la réalisation d'un test VIH (HIV v.2.0) et sont au moins comparables à celles enregistrées avec l'analyseur EasyQ. Du fait que l'invention a utilisé un volume réactionnel de 5 pL (au lieu de 40 pL pour EasyQ), la quantité de réactifs par test a été divisée par huit. Ceci conduit à un coût de production par test bien plus bas, car ce coût est surtout dû aux enzymes, représentant environ 80% de l'ensemble des ingrédients du kit. Le dispositif selon l'invention réduit également grandement le nombre d'étapes manuelles, puisque seulement trois actions basiques sont nécessaires pour lancer un test : • chargement du dispositif selon l'invention, • charger le tube contenant les cibles extraites (par l'appareil d'extraction EasyMAG (Réf. 200111, bioMérieux S.A., Marcy l'Etoile, France), et • démarrer le test.5 REFERENCES 1 - Dispositif jetable 2 - Corps solide du dispositif 1 3 - Circuit ou canal fluidique au sein du corps 2 4 Trou débouchant du canal appelé entrée 5 - Trou débouchant du canal appelé sortie 6 - Echantillon liquide et biologique d'intérêt 7 Moyen d'aspiration-refoulement 8 Premier compartiment le long du canal 3 9 Deuxième compartiment le long du canal 3 10 Troisième compartiment le long du canal 3 11 Première zone destinée au chauffage 12 - Constituants thermostables contenus dans le compartiment 8 13 - Constituants non-thermostables contenus dans le compartiment 9 14 Film délimitant 15 Moyen de mélange 16 Cône de pipette intégré ou mandrin récepteur d'un cône 28 17 - Cylindre du moyen d'aspiration-refoulement 7 18 Piston du moyen d'aspiration-refoulement 7 19 Chicane du moyen de mélange 15 20 - Contenant où l'échantillon 6 est initialement présent 21 Moyen de liaison avec un actionneur 22 Seconde zone destinée au chauffage 23 Guide du piston 18 25 - Trou transversal 26 Tête du piston 27 - Vanne de fermeture définitive ou de scellement 28 Cône de pipette conventionnel 100 - Dispositif jetable à deux canaux 3 parallèles 200 - Dispositif jetable à huit canaux 3 parallèles F1 - Mouvement du piston 18 dans le cylindre 19 qui diminue le volume de fluide au sein du circuit fluidique 3 F2 Mouvement du piston 18 dans le cylindre 19 qui augmente le volume de fluide au sein du circuit fluidique 3 F3 Mouvement de l'échantillon 6 sous l'action du mouvement F4 - Mouvement de l'échantillon 6 sous l'action du mouvement F5 Emmanchement du cône 28 sur le manchon 16 F1 F2 REVENDICATIONS1. Dispositif jetable (1) permettant l'amplification d'au moins un acide nucléique cible, présent dans un échantillon liquide et biologique d'intérêt (6), qui est constitué d'un corps solide (2), d'au moins un canal fluidique (3) connectant une entrée (4), par laquelle tout ou partie de l'échantillon d'intérêt (6) peut être aspiré et/ou refoulé, et une sortie (5), qui est elle- même raccordée à un moyen d'aspiration-refoulement (7) dudit échantillon d'intérêt, le canal fluidique (3) comprenant en outre de l'entrée (4) jusqu'à la sortie (5) . • un premier compartiment (8) contenant tout ou partie des constituants thermostables (12) nécessaires à la réalisation de l'amplification, • un moyen de mélange (15) des constituants (12 éventuellement associés à 13) avec l'échantillon d'intérêt (6), • un deuxième compartiment (9) contenant tout ou partie des constituants non-thermostables (13) nécessaires à la réalisation de l'amplification, • et en plus au moins une zone destinée au chauffage (11) dudit échantillon d'intérêt (6) mélangé auxdits constituants d'amplification (12 associés à 13), afin de permettre l'amplification de l'acide nucléique cible. 2. Dispositif, selon la revendication 1, permettant la 30 détection des amplicons, caractérisé par le fait qu'il comprend de surcroît au niveau du deuxième compartiment (9), tout ou partie des constituants de détection nécessaires à la détection des amplicons. 25 3. Dispositif, selon la revendication 1, permettant la détection des amplicons, caractérisé par le fait qu'il comprend de surcroît au niveau du canal fluidique (3) un troisième compartiment (10) contenant tout ou partie des constituants nécessaires à la détection des amplicons. 4. Dispositif, selon la revendication 3, caractérisé par le fait que le troisième compartiment (10) est situé entre le deuxième compartiment (9) et la sortie (5) du 10 dispositif (1). 5. Dispositif, selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisé par le fait que l'entrée (3) reçoit un cône (28) de pipette (16) ou l'embout (3) de pipette 15 possède une configuration en forme de cône de pipette. 6. Dispositif, selon l'une quelconque des revendications 1 à 5, caractérisé par le fait que le dispositif d'aspiration-refoulement (7) est de type à piston tel 20 que par exemple une pipette (7). 7. Dispositif, selon l'une quelconque des revendications 1 à 6, caractérisé par le fait la section du canal (3) est constante et que les compartiments (8, 9 et 25 éventuellement 10) sont d'une section plus importante. 8. Dispositif, selon l'une quelconque des revendications 1 à 7, caractérisé par le fait que l'entrée (4) est en relation avec au moins deux canaux fluidiques (3). 9. Dispositif, selon l'une quelconque des revendications 1 à 8, caractérisé par le fait la sortie (5) est constituée par au moins deux canaux fluidiques (3). 30 10. Dispositif, selon l'une quelconque des revendications 1 à 9, caractérisé par le fait les constituants (12 & 13) sont formés de composés biologiques lyophilisés ou séchés, solubles dans l'échantillon d'intérêt (6). 11. Dispositif, selon l'une quelconque des revendications 1 à 10, caractérisé par le fait le moyen d'aspiration-refoulement (7) est partie intégrante du dispositif jetable (1). 10 12. Dispositif, selon la revendication 11, caractérisé par le fait le moyen d'aspiration-refoulement (7) est constitué d'un cylindre (17) connecté au canal fluidique (3) et d'un piston (18) mobile au sein du cylindre (17) 15 manuellement ou par l'intermédiaire d'un actionneur. 13. Dispositif, selon l'une quelconque des revendications 1 à 12, caractérisé par le fait le moyen de mélange (15) est constitué du canal fluidique (3) dont le cheminement 20 comprend au moins une chicane (19). 14. Procédé d'amplification d'au moins un acide nucléique cible, présent dans un échantillon liquide et biologique d'intérêt (6), réalisé au sein d'un dispositif selon 25 l'une quelconque des revendications 1 à 13, 'qui consiste : (a) aspirer par l'entrée (4) tout ou partie de l'échantillon d'intérêt (6) au sein du dispositif (1), 30 (b) déplacer ledit échantillon (6) pour y dissoudre les constituants d'amplification thermostables (12), (c) mélanger échantillon (6) et constituants thermostables (12),5(d) appliquer un premier gradient de température afin de dénaturer l'acide nucléique d'intérêt, (e) déplacer la mixture (6 + 12) pour y dissoudre les constituants d'amplification non-thermostables (13), (f) mélanger mixture (6 + 12) et constituants non-thermostables (13), et (g) appliquer au moins un second gradient de température afin d'amplifier l'acide nucléique dénaturé. 10 15. Procédé, selon la revendication 14, caractérisé en ce que les constituants d'amplification thermostables (12) de l'étape (b) contiennent également des enzymes de restriction, qui ne sont pas forcément thermostables, mais qui permettent la digestion des acides nucléiques 15 d'intérêt, qui sont des acides désoxyribonucléiques (ADN), préalablement à l'application du premier gradient de température de l'étape (d). 16. Procédé, selon l'une quelconque des revendications 14 ou 20 15, permettant la détection des amplicons, caractérisé en ce qu'il consiste, après l'étape (g) à (h) mélanger mixture (6 + 12 + 13), (i) déplacer la nouvelle mixture (6 + 12 + 13) pour y dissoudre les constituants de détection (14), et 25 (j) détecter la présence d'amplicons. 17. Procédé, selon l'une quelconque des revendications 14 à 16, caractérisé en ce que l'amplification est une amplification PCR, pour laquelle le premier gradient de 30 température est compris entre 90 et 100°C, et les seconds gradients de température est une alternance de la température en trois étapes différentes : entre 90 et 100°C pour la première température de dénaturation, préférentiellement d'environ 94°C,• entre 50 et 60°C pour la deuxième température d'hybridation, préférentiellement d'environ 55°C, • entre 70 et 75°C pour la troisième température de polymérisation, préférentiellement d'environ 72°C. 18. Procédé, selon l'une quelconque des revendications 14 à 16, caractérisé en ce que l'amplification est une amplification post transcriptionnelle (NASBA ou TMA), pour laquelle le premier gradient de température est compris entre 60 et 70°C, préférentiellement d'environ 65°C, et le second gradient de température est compris entre entre 40 et 50°C pour le second gradient de température de polymérisation. 19. Procédé, selon l'une quelconque des revendications 14 à 18, caractérisé en ce que le premier gradient de température est appliqué au niveau du premier compartiment (8) et/ou du moyen de mélange (15), et que le ou les seconds gradients de température est ou sont appliqués au niveau du moyen de mélange (15) et/ou du second compartiment (9) et/ou du troisième compartiment (10) 20. Procédé, selon l'une quelconque des revendications 14 à 18, caractérisé en ce que le premier gradient de température est appliqué pendant 5 à 20 minutes, préférentiellement 15 minutes, et que le ou les seconds gradients de température est ou sont appliqués • dans le cas d'une amplification PCR : pour la dénaturation, pendant moins de une minute, préférentiellement de 2 à 20 secondes, préférentiellement 5 secondes, 10pour l'hybridation, pendant moins de une minute, préférentiellement de 2 à 20 secondes, préférentiellement 5 secondes, et - pour la polymérisation, pendant moins de deux minutes, préférentiellement de 5 à 80 secondes, préférentiellement 10 secondes, • dans le cas d'une amplification posttranscriptionnelle, pendant moins de deux heures, préférentiellement de 5 à 80 minutes, et encore plus préférentiellement : environ 60 minutes dans le cas d'acides nucléiques cibles ARN, ou environ 90 minutes dans le cas d'acides nucléiques cibles ADN. 15