Brevet FR2944804A1 — publié le 20101029

La présente invention a pour objet la 4S-iota-carraghénane sulfatase et son utilisation pour la conversion partielle ou totale du iota-carraghénane en iota-/alphacarraghénane ou en alpha-carraghénane. Elle a également pour objet le procédé 10 d'extraction de cette enzyme à partir d'une population bactérienne Pseudoalteromonas, ou bien à partir d'algues rouges marines. Enfin, la présente invention concerne l'utilisation de la 4S-iota-carraghénane sulfatase pour la préparation d'un agent de texture comprenant de l'alpha-carraghénane. 15 Les carraghénanes définissent des familles de galactanes sulfatés isolés de la matrice extra-cellulaire des algues rouges marines. Ces polysaccharides anioniques ont des propriétés rhéologiques uniques et sont utilisés comme agents de texture en industrie agro-alimentaire, parapharmacie et cosmétique. Les carraghénanes sont 20 composés d'un enchaînement de D-galactoses liés alternativement par des liaisons alpha (1-3) et bêta (1-4). Ces polysaccharides se distinguent par la présence ou non d'un pont 3,6 anhydro sur le résidu galactose lié en alpha (1-3) et par leur taux de sulfatation. Les carraghénanes possèdent une grande diversité de structures chimiques qui 25 sont corrélées à un large spectre de leurs propriétés fonctionnelles. Par conséquent, à chaque source d'algues correspond des propriétés et des applications qui leurs sont propres. Par ailleurs, en fonction de la structure du carraghénane (par exemple alpha- ou iota-carraghénane) et de l'origine de l'algue (cultivée ou collectée dans le milieu naturel), l'abondance et le coût de ces macromolécules sont très variables. Le tonnage 30 des carraghénanes exploités est limité par la quantité d'algues rouges disponibles. S'agissant de l'alpha-carraghénane, ce polysaccharide a été observé dans l'algue Catenella nipae. Dans la nature, l'alpha-carraghénane est toujours associé à du iota- carraghénane. On peut citer l'article de Zablackis et Santos (1986), qui décrit pour la 1 première fois la présence d'alpha-carraghénane et le travail de Falshaw et al. (1996), qui réalisent l'analyse structurale du polysaccharide. Dans ce contexte, l'utilisation d'enzymes pour manipuler la structure chimique 5 des carraghénanes permet de contrôler l'approvisionnement et les propriétés fonctionnelles des carraghénanes. Dans la présente invention, les Inventeurs ont identifié à partir d'extraits de bactéries marines une sulfatase agissant sur le iota-carraghénane, la 4S-iotacarraghénane sulfatase. Cette enzyme permet de catalyser la désulfatation spécifique en 10 position 4 du iota-carraghénane, conduisant en une seule étape à de l'alphacarraghénane ou à une structure hybride de type alpha-/iota-carraghénane. La réaction s'effectue sans modification apparente du poids moléculaire du carraghénane, permettant ainsi une amélioration notable des propriétés de gélification. La 4S-iotacarraghénane sulfatase a été purifiée et séquencée. 15 Les Inventeurs ont ainsi pu déterminer que la protéine hypothétique Q3IKL4 (SEQ ID N°5) de la bactérie marine Pseudoalteromonas haloplanktis, dont le génome a été entièrement séquencé, et qui est référencée dans la banque protéique TrEMBL accessible sur Internet à l'adresse http://www.ebi.ac.uk/trembl/, correspond en fait à la 4S-iota-carraghénane sulfatase. 20 La présente invention offre de nombreux avantages pour les raisons suivantes : - L'invention offre la possibilité de s'affranchir de certaines ressources d'algues dont les coûts deviennent très élevés. - L'invention permet de produire des carraghénanes de structures hybrides à partir de carraghénanes extraits d'algues cultivées (peu chères). 25 - L'invention permet également de produire l'alpha-carraghénane, qui est une structure peu abondante, voire inexistante dans la nature. Grâce au séquençage de la 4S-iota-carraghénane sulfatase, il est maintenant possible de produire et d'exploiter cette enzyme à grande échelle. 30 Ainsi, selon un premier aspect, la présente invention a pour objet un polypeptide isolé comprenant une séquence amino-acide ayant au moins 65 % d'identité avec la séquence SEQ ID N°2 ou la séquence SEQ ID N°4. La présente invention a également pour objet un polypeptide isolé consistant en une séquence amino-acide ayant au moins 65 % d'identité avec la séquence SEQ ID N°2 ou la séquence SEQ ID N°4. Dans la présente invention, on entend par polypeptide isolé comprenant ou consistant en une séquence amino-acide ayant au moins 65 % d'identité, de préférence au moins 70 %, 75 %, 80 %, 85 %, 90 %, 93 %, 94 %, 95 %, 96 %, 97%,98%,99% d'identité avec la séquence SEQ ID N°2 ou la séquence SEQ ID N°4, un polypeptide qui possède la fonction 4S-iota-carraghénane sulfatase. La 4S-iota-carraghénane sulfatase est une enzyme qui permet de convertir le iota-carraghénane en alpha-carraghénane par désulfatation (élimination d'un groupement S03_) spécifique en position 4 du iotacarraghénane (voir schéma ci-dessous). Le poids moléculaire de la 4S-iota-carraghénane sulfatase est de 110 kDaltons environ. 20 m os0, J iota-carraghénane n=1 motif iota-carrabiose OH Oso, Alpha-carraghénane m=1 motif alpha-carrabiose Schéma 1 : Réaction enzymatique catalysée par la 4S-iota-carraghénane sulfatase Le iota-carraghénane correspond à au moins un motif iota-carrabiose, de 25 préférence un enchaînement de motifs iota-carrabiose. On parlera d'oligomères ou de polymères de iota-carraghénane en fonction du nombre n d'unités de répétition du motif iota-carrabiose. Le(s) motif(s) iota-carrabiose peu(ven)t être associé(s) à au moins un autre motif de répétition, formant ainsi un iota-carraghénane hybride, voire un oligo-iota- 30 carraghénane hybride ou un copolymère de iota-carraghénane lorsque plusieurs motifs iota-carrabiose sont associés à d'autres motifs de répétition au sein d'une même chaîne de polysaccharides. Dans la présente invention, les termes polypeptide, séquence polypeptidique, peptide, séquence peptidique, protéine, séquence protéique, séquence amino-acide sont interchangeables. Il doit être compris ici que l'invention ne concerne pas la 4S-iota-carraghénane 5 sulfatase sous forme naturelle, c'est-à-dire prise dans son environnement naturel, mais la 4S-iota-carraghénane sulfatase isolée et/ou purifiée à partir de sources naturelles, ou bien obtenue par recombinaison génétique ou synthèse chimique. Par �pourcentage d'identité � entre deux séquences d'acide nucléique ou d'acide aminé au sens de la présente invention, on entend désigner un pourcentage de 10 nucléotides ou d'acides aminés identiques entre les deux séquences à comparer, obtenu après le meilleur alignement (alignement optimal), ce pourcentage étant purement statistique et les différences entre les deux séquences étant réparties au hasard et sur toute leur longueur. Les comparaisons de séquences entre deux séquences d'acide nucléique ou d'acide aminé sont traditionnellement réalisées en comparant ces 15 séquences après les avoir alignées de manière optimale, ladite comparaison pouvant être réalisée par segment ou par �fenêtre de comparaison �. L'alignement optimal des séquences pour la comparaison peut être réalisé, outre manuellement, au moyen de l'algorithme d'homologie locale de Smith et Waterman (1981) [Ad. App. Math. 2:482], au moyen de l'algorithme d'homologie locale de Neddleman et Wunsch (1970) [J. Mol. 20 Biol. 48:443], au moyen de la méthode de recherche de similarité de Pearson et Lipman (1988) [Proc. Natl. Acad. Sei. USA 85:2444], au moyen de logiciels informatiques utilisant ces algorithmes (GAP, BESTFIT, FASTA et TFASTA dans le Wisconsin Genetics Software Package, Genetics Computer Group, 575 Science Dr., Madison, WI, ou encore par les logiciels de comparaison BLAST N ou BLAST P). 25 Le pourcentage d'identité entre deux séquences d'acide nucléique ou d'acide aminé est déterminé en comparant ces deux séquences alignées de manière optimale dans laquelle la séquence d'acide nucléique ou d'acide aminé à comparer peut comprendre des additions ou des délétions par rapport à la séquence de référence pour un alignement optimal entre ces deux séquences. Le pourcentage d'identité est calculé 30 en déterminant le nombre de positions identiques pour lesquelles le nucléotide ou le résidu d'acide aminé est identique entre les deux séquences, en divisant ce nombre de positions identiques par le nombre total de positions dans la fenêtre de comparaison et en multipliant le résultat obtenu par 100 pour obtenir le pourcentage d'identité entre ces deux séquences. Par exemple, on pourra utiliser le programme BLAST, � BLAST2 sequences � (Tatusova et al., � Blast 2 sequences û a new tool for comparing protein and nucleotide sequences �, FEMS Microbiol., 1999 Lett. 174:247-250) disponible sur le site http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi (lien � Specialized BLAST �, � Align two sequences using BLAST (bl2seq) �), le pourcentage d'identité entre les deux séquences à comparer étant calculé directement par le programme. Par séquence d'acide aminé présentant ou ayant au moins 65 % d'identité, de préférence au moins 70 %, 75 %, 80 %, 85 %, 90 %, 93 %, 94 %, 95 %, 96 %, 97 %, 98 %, 99 % d'identité avec une séquence d'acide aminé de référence, on préfère celles présentant par rapport à la séquence de référence, certaines modifications, en particulier une délétion, addition ou substitution d'au moins un acide aminé, une troncation ou un allongement. Dans le cas d'une substitution d'un ou plusieurs acide(s) aminé(s) consécutif(s) ou non consécutif(s), on préfère les substitutions dans lesquelles les acides aminés substitués sont remplacés par des acides aminés �équivalents �. L'expression � acides aminés équivalents � vise ici à désigner tout acide aminé susceptible d'être substitué à l'un des acides aminés de la structure de base sans cependant modifier essentiellement la fonction 4S-iota-carraghénane sulfatase. Ces acides aminés peuvent être déterminés soit en s'appuyant sur leur homologie de structure avec les acides aminés auxquels ils se substituent, soit sur des résultats d'essais comparatifs de la fonction 4S-iota-carraghénane sulfatase entre les différentes séquences susceptibles d'être effectués. A titre d'exemple non limitatif, le tableau 1 ci-dessous reprend les possibilités de substitution susceptibles d'être effectuées sans qu'il en résulte une modification approfondie de la fonction de la 4S-iota-carraghénane sulfatase, les substitutions inverses étant naturellement envisageables dans les mêmes conditions. Tableau 1 Résidu originel Substitution(s) Ala (A) Val, Gly, Pro Arg (R) Lys, His Asn (N) Gln Asp (D) Glu Cys (C) Ser Gln (Q) Asn Glu (E) Asp Gly (G) Ala His (H) Arg Ile (I) Leu Leu (L) Ile, Val, Met Lys (K) Arg Met (M) Leu Phe (F) Tyr Pro (P) Ala Ser (S) Thr, Cys Thr (T) Ser Trp (W) Tyr Tyr (Y) Phe, Trp Val (V) Leu, Ala Le polypeptide isolé selon la présente invention peut comprendre, en plus de la séquence amino-acide ayant au moins 65 % d'identité avec la séquence SEQ ID N°2 ou la séquence SEQ ID N°4, au moins une autre séquence peptidique telle qu'un peptide signal ou un module de liaison à un hydrate de carbone (ou CBM pour � carbohydrate- binding module �). De tels modules sont bien connus de l'homme de l'art et sont notamment accessibles sur Internet à l'adresse www.cazy.org/. Il peut également s'agir d'une protéine telle qu'une enzyme, par exemple une carraghénase, auquel cas on parlera de polypeptide de fusion. D'autres possibilités peuvent être envisagées et la liste des autres séquences peptidiques incluses dans le polypeptide selon l'invention n'est pas limitative. Lorsque le polypeptide isolé selon la présente invention comprend également un peptide signal, ledit peptide signal a pour fonction d'exporter la protéine de séquence amino-acide ayant au moins 65 % d'identité avec la séquence SEQ ID N°2 ou la séquence SEQ ID N°4, vers un compartiment cellulaire particulier, voire à l'extérieur d'une cellule. Dans la présente invention on préfèrera les peptides signaux des carraghénases, avantageusement les peptides signaux des carraghénases de Pseudoalteromonas haloplanktis, Pseudoalteromonas carrageenovora, Pseudoalteromonas tunicata, Alteromonadales bacterium, ou Shewanella denitrificans. De manière encore plus préférée, le peptide signal est choisi dans le groupe constitué par les peptides de séquence SEQ ID N°6, SEQ ID N°7, SEQ ID N°8 et SEQ ID N°9. Tableau 2 Organisme Séquence du peptide signal Numéro de séquence Pseudoalteromonas MKKFIYSSVAFAVAMTFSPASFA SEQ ID N°6 tunicata Shewanella MLMLSIKFTPLYTAIALTLGCSSLVY SEQ ID N°7 denitrificans A Alteromonodales MKKLLHTALALSVSLALGQAHA SEQ ID N°8 bacterium TW-7 Pseudoalteromonas MKKMLQTVLALSVSLALGNAQA SEQ ID N°9 haloplanktis De préférence, le polypeptide isolé selon la présente invention comprenant ou consistant en la séquence amino-acide ayant au moins 65 % d'identité avec SEQ ID N°2 ou SEQ ID N°4, a une taille comprise entre 1025 et 1070 acides aminés, avantageusement entre 1027 et 1060 acides aminés, encore plus avantageusement entre 1028 et 1055 acides aminés, encore plus avantageusement entre 1030 et 1045 acides aminés, encore plus avantageusement entre 1035 et 1040 acides aminés, de manière préférée entre toutes de 1038 acides aminés. Selon une autre préférence, la séquence du polypeptide isolé selon la présente invention comprenant ou consistant en la séquence amino-acide ayant au moins 65 % d'identité avec SEQ ID N°2 ou SEQ ID N°4, correspond à celle d'une 4S-iotacarraghénane sulfatase de Pseudoalteromonas. Egalement de manière préférée, la séquence du polypeptide isolé selon la présente invention comprenant ou consistant en la séquence amino-acide ayant au moins 65 % d'identité avec SEQ ID N°2 ou SEQ ID N°4, correspond à celle d'une 4S-iota- carraghénane sulfatase de Pseudoalteromonas et a une taille comprise entre 1025 et 1055 acides aminés, avantageusement entre 1030 et 1045 acides aminés, entre 1035 et 1040 acides aminés, de manière préférée entre toutes de 1038 acides aminés. De manière encore plus préférée, la présente invention a pour objet un polypeptide isolé comprenant une séquence amino-acide ayant au moins 95 % d'identité avec une séquence amino-acide choisie dans le groupe constitué par les séquences SEQ ID N°2 et SEQ ID N°4. De manière également préférée, la présente invention a pour objet un polypeptide isolé consistant en une séquence amino-acide ayant au moins 95 % d'identité avec une séquence amino-acide choisie dans le groupe constitué par les séquences SEQ ID N°2 et SEQ ID N°4. De manière préférée entre toutes, la présente invention a également pour objet un polypeptide isolé comprenant une séquence amino-acide choisie dans le groupe constitué par les séquences SEQ ID N°2 et SEQ ID N°4. Egalement de manière préférée entre toutes, la présente invention a pour objet un polypeptide isolé consistant en une séquence amino-acide choisie dans le groupe constitué par les séquences SEQ ID N°2 et SEQ ID N°4. Selon un autre aspect, la présente invention a pour objet un polynucléotide isolé 20 choisi parmi les polynucléotides suivants : a) un polynucléotide, ADN ou ARN, codant le polypeptide selon la présente invention tel que défini ci-dessus ; et b) un polynucléotide complémentaire d'un polynucléotide tel que défini en a). 25 Par polynucléotide, séquence de polynucléotide, acide nucléique, séquence nucléique ou d'acide nucléique, termes qui sont désignés indifféremment dans la présente description, on entend désigner un enchaînement précis de nucléotides, modifiés ou non, permettant de définir un fragment ou une région d'un acide nucléique, comportant ou non des nucléotides non naturels, et pouvant correspondre aussi bien à un 30 ADN double brin, un ADN simple brin, que des produits de transcription desdits ADN. Il doit aussi être compris ici que la présente invention ne concerne pas les séquences nucléotidiques dans leur environnement chromosomique naturel, c'est-à-dire à l'état naturel. Il s'agit de séquences qui ont été isolées etlou purifiées, c'est-à-dire qu'elles ont été prélevées directement ou indirectement, par exemple par copie, leur environnement ayant été au moins partiellement modifié. On entend ainsi également désigner ici les acides nucléiques isolés obtenus par recombinaison génétique ou par synthèse chimique. De préférence, le polynucléotide qui code le polypeptide selon la présente invention comprend une séquence nucléotidique ayant au moins 65 % d'identité, de préférence au moins 70 %, 75 %, 80 %, 85 %, 90 %, 93 %, 94 %, 95 %, 96 %, 97 %, 98 %, 99 % d'identité avec la séquence SEQ ID N°l ou la séquence SEQ ID N°3. Selon une autre préférence, le polynucléotide qui code le polypeptide selon la présente invention consiste en une séquence nucléotidique ayant au moins 65 % d'identité, de préférence au moins 70 %, 75 %, 80 %, 85 %, 90 %, 93 %, 94 %, 95 %, 96 %, 97 %, 98 %, 99 % d'identité avec la séquence SEQ ID N°1 ou la séquence SEQ ID N°3. Par polynucléotide présentant au moins 65 % d'identité, de préférence au moins 70 %, 75 %, 80 %, 85 %, 90 %, 93 %, 94 %, 95 %, 96 %, 97 %, 98 %, 99 cYo d'identité avec une séquence, on entend désigner les polynucléotides présentant, par rapport au polynucléotide de référence, certaines modifications comme en particulier une délétion, une troncation, un allongement, une fusion chimérique et/ou une substitution, notamment ponctuelle. Il s'agit de préférence de séquences codant les mêmes séquences amino-acides que la séquence de référence, ceci lié à la dégénérescence du code génétique, ou de séquences complémentaires qui sont susceptibles de s'hybrider spécifiquement avec les séquences nucléotidiques de référence, de préférence dans des conditions de forte stringence. Une hybridation dans des conditions de forte stringence signifie que les conditions de température et de force ionique sont choisies de telle manière qu'elles permettent le maintien de l'hybridation entre deux fragments d'ADN complémentaires. De manière davantage préférée, la séquence nucléotidique est choisie dans le groupe constitué par la séquence SEQ ID N°1 et la séquence SEQ ID N°3. La présente invention est également relative à un vecteur d'expression comprenant un polynucléotide selon la présente invention tel que défini ci-dessus. L'invention vise notamment les vecteurs de clonage et/ou d'expression qui contiennent une séquence nucléotidique selon l'invention. Les vecteurs selon l'invention comportent de préférence des éléments qui permettent l'expression et/ou la sécrétion des séquences nucléotidiques dans une cellule hôte déterminée. Le vecteur doit alors comporter un promoteur, des signaux d'initiation et de terminaison de la traduction, ainsi que des régions appropriées de régulation de la transcription. Il doit pouvoir être maintenu de façon stable dans la cellule hôte et peut éventuellement posséder des signaux particuliers qui spécifient la sécrétion de la protéine traduite. Ces différents éléments sont choisis et optimisés par l'homme du métier en fonction de l'hôte cellulaire utilisé. A cet effet, les séquences nucléotidiques selon l'invention peuvent être insérées dans des vecteurs à réplication autonome au sein de l'hôte choisi, ou être des vecteurs intégratifs de l'hôte choisi. De tels vecteurs sont préparés par des méthodes couramment utilisées par l'homme du métier, et les clones résultants peuvent être introduits dans un hôte approprié par des méthodes standard, telles que la lipofection, l'électroporation, le choc thermique, ou des méthodes chimiques. Les vecteurs selon l'invention sont par exemple des vecteurs d'origine plasmidique ou virale. Ils sont utiles pour transformer des cellules hôtes afin de cloner ou d'exprimer les séquences nucléotidiques selon l'invention. L'invention comprend également une cellule hôte comprenant un vecteur selon la présente invention ou transformée par un vecteur selon la présente invention. L'hôte cellulaire peut être choisi parmi des systèmes procaryotes ou eucaryotes, par exemple les cellules bactériennes telles que E. coli ou Bacillus, mais également des cellules de levure ou des cellules animales. L'invention concerne également les organismes qui contiennent une cellule transformée selon l'invention, tels que des algues rouges, des micro-algues ou des plantes terrestres. Selon un autre aspect, l'invention a pour objet un procédé de production d'un 30 polypeptide selon la présente invention comprenant les étapes suivantes : a) la culture dans un milieu et conditions de culture appropriés d'une population de cellules hôtes selon l'invention ; et b) la récupération desdits polypeptides ainsi produits à partir du milieu de culture ou de la population de cellules hôtes cultivées. Les cellules transformées selon l'invention sont utilisables dans des procédés de préparation de polypeptides recombinants selon l'invention. Les procédés de préparation d'un polypeptide selon l'invention sous forme recombinante, caractérisés en ce qu'ils mettent en oeuvre un vecteur et/ou une cellule transformée par un vecteur selon l'invention, sont eux-mêmes compris dans la présente invention. De préférence, on cultive une cellule transformée par un vecteur selon l'invention dans des conditions qui permettent l'expression dudit polypeptide et on récupère ledit polypeptide recombinant. Ainsi qu'il a été dit, l'hôte cellulaire peut être choisi parmi des systèmes procaryotes ou eucaryotes. En particulier, il est possible d'identifier des séquences nucléotidiques selon l'invention, facilitant la sécrétion dans un tel système procaryote ou eucaryote. Un vecteur selon l'invention portant une telle séquence peut donc être utilisé pour la production de protéines recombinantes, destinées à être sécrétées. En effet, la purification de ces protéines recombinantes d'intérêt sera facilitée par le fait qu'elles sont présentes dans le surnageant de la culture cellulaire plutôt qu'à l'intérieur des cellules hôtes. Alternativement, s'agissant des systèmes procaryotes, on peut faire surexprimer les protéines dans l'espace périplasmique des bactéries, ce qui permet d'éviter de manipuler les volumes parfois importants des milieux de culture. On peut également préparer les polypeptides selon l'invention par synthèse chimique. Un tel procédé de préparation est également un objet de l'invention. L'homme du métier connaît les procédés de synthèse chimique, par exemple les techniques mettant en oeuvre des phases solides (voir notamment Steward et al., 1984, � Solid phase peptide synthesis �, Pierce Chem. Company, Rockford, 111, 2eme éd.) ou des techniques utilisant des phases solides partielles, par condensation de fragments ou par une synthèse en solution classique. Les polypeptides obtenus par synthèse chimique et pouvant comporter des acides aminés non naturels correspondants sont également compris dans l'invention. Les polypeptides susceptibles d'être obtenus par un procédé de production selon 30 la présente invention sont également compris dans l'invention. Selon un autre aspect, l'invention a pour objet un procédé d'obtention d'une 4S-iota-carraghénane sulfatase à partir d'une population bactérienne susceptible de contenir la 4S-iota-carraghénane sulfatase comprenant : (a) la mise en culture de la population bactérienne dans un milieu et 5 conditions de culture appropriés pour l'obtention de la 4S-iota-carraghénane sulfatase dans le milieu de culture, et (b) l'obtention de la 4S-iota-carraghénane sulfatase à partir du milieu de culture obtenu à l'étape (a). Dans la présente invention, on entend par population bactérienne susceptible de 10 contenir la 4S-iota-carraghénane sulfatase une population bactérienne dont on suppose qu'elle exprime la 4S-iota-carraghénane sulfatase. Il s'agit de préférence d'une population bactérienne ayant une activité carraghénase, c'est-à-dire une activité permettant de dégrader un carraghénane (� population bactérienne carraghénolytique �). De telles bactéries sont notamment décrites dans l'article scientifique Michel et al, 2006. 15 La population bactérienne ayant une activité carraghénase est de préférence une population bactérienne appartenant à la classe Gammaproteobacteria, Flavobacteria ou Sphingobacteria. De préférence, il s'agit d'une population bactérienne appartenant au genre Alteromonas, Pseudoalteromonas, Cobetia ou Zobellia. De manière encore plus préférée, la population bactérienne appartient au genre Pseudoalteromonas. 20 De préférence, l'invention a pour objet le procédé d'obtention de la 4S-iotacarraghénane sulfatase à partir de la population bactérienne Pseudoalteromonas haloplanktis et/ou Pseudoalteromonas carrageenovora. Un milieu de culture approprié pour une population bactérienne selon l'invention est le milieu Zobell (voir la composition dans la partie Exemples ci- 25 dessous). Il peut également s'agir du milieu de culture DIFCO 2216 (� bacto marine broth �), dont la composition est généralement la suivante : Bacto peptone 5,00 g, extrait de levure 1,00 g, Fe(III) citrate 0,10 g, NaCl 19,45 g, MgCl2 (anhydre) 5,90 g, Na2SO4 3,24 g, CaCl2 1,80 g, KCI 0,55 g, Na2CO3 0,16 g, KBr 0,08 g, SrC12 34,00 mg, H3BO3 22,00 mg, Na-silicate 4,00 mg, NaF 2,40 mg, (NH4)NO3 1,60 mg, Na2HPO4 8,00 mg. 30 Avantageusement, 37,4 g de ce mélange sont ajoutés à 1L d'eau osmosée pour obtenir I L de milieu liquide (le site http://www.bd.com/ds/technicalCenter/inserts/difcoBblManual.asp décrit la procédure de préparation du milieu). Il peut encore s'agir d'une gélose marine, qui contient des ingrédients d'eau de mer synthétique (NaCl, MgC12, Na2SO4, CaC12, KC1, etc.) ainsi que de la peptone et de l'extrait de levure en tant que source d'azote organique, de vitamines et de minéraux. Les conditions appropriées pour la mise en culture de la population bactérienne selon l'invention incluent la température, avantageusement entre 15 et 20°C, le temps de culture, avantageusement de 24 à 36 heures, et sous agitation, avantageusement entre 200 et 250 rpm. De préférence, le milieu de culture de l'étape (a) contient en outre un carraghénane, ceci afin d'induire une activité 4S-iota-carraghénane sulfatase. De manière encore plus préférée, le carraghénane est choisi parmi le iota-carraghénane, le lambda-carraghénane et le nu-carraghénane. De manière préférée entre toutes, lorsque la population bactérienne est une population bactérienne Pseudoalteromonas carrageenovora, le milieu de culture de l'étape (a) contient en outre du lambda-carraghénane, ceci afin d'induire une activité 4S- iota-carraghénane sulfatase. Selon une autre alternative, lorsque la population bactérienne est une population bactérienne Pseudoalteromonas haloplanktis, le milieu de culture de l'étape (a) contient en outre du iota-carraghénane ou un mélange iota/nu-carraghénane, ceci afin d'induire une activité 4S-iota-carraghénane sulfatase. Avantageusement, la concentration en carraghénane ajouté au milieu de culture à l'étape (a) est comprise entre 0,5 et 1,5 g/L, de préférence 1,0 g/L. De manière encore plus avantageuse, la concentration en lambda-carraghénane ajouté au milieu de culture à l'étape (a) est comprise entre 0,5 et 1,5 g/L, de préférence 1,0 g/L. De préférence, le procédé d'obtention selon l'invention est tel que l'étape (b) inclut les sous-étapes suivantes : (bl) la centrifugation du milieu de culture obtenu à l'étape (a), et (b2) l'obtention de la 4S-iota-carraghénane sulfatase à partir du surnageant et/ou du culot de culture obtenu à l'étape (b1), avantageusement à partir du culot de 30 culture. Pour obtenir la 4S-iota-carraghénane sulfatase à partir du surnageant, ledit surnageant est de préférence concentré, par exemple par précipitation à saturation en sulfate d'ammonium. Pour obtenir la 4S-iota-carraghénane sulfatase à partir du culot, ledit culot est de préférence remis en suspension dans un tampon approprié tel que du tampon Tris HCL, et les cellules sont ensuite lysées par toute technique appropriée, par exemple en utilisant la presse de French. Une centrifugation est réalisée en dernier lieu pour éliminer les débris cellulaires. De manière préférée entre toutes, le procédé d'obtention d'une 4S-iotacarraghénane sulfatase à partir d'une population bactérienne Pseudoalteromonas carrageenovora comprend: (a) la mise en culture de la population bactérienne Pseudoalteromonas carrageenovora dans un milieu et conditions de culture appropriés pour l'obtention de la 4S-iota-carraghénane sulfatase dans le milieu de culture, ledit milieu contenant en outre du lambda-carraghénane, (bl) la centrifugation du milieu de culture obtenu à l'étape (a), et (b2) l'obtention de la 4S-iota-carraghénane sulfatase à partir du culot de 15 culture obtenu à l'étape (bl). Selon une autre alternative préférée entre toutes, le procédé d'obtention d'une 4S-iota-carraghénane sulfatase à partir d'une population bactérienne Pseudoalteromonas haloplanktis comprend : (a) la mise en culture de la population bactérienne Pseudoalteromonas 20 haloplanktis dans un milieu et conditions de culture appropriés pour l'obtention de la 4S-iota-carraghénane sulfatase dans le milieu de culture, ledit milieu contenant en outre du iota-carraghénane ou un mélange iota/nu-carraghénane, (bl) la centrifugation du milieu de culture obtenu à l'étape (a), et (b2) l'obtention de la 4S-iota-carraghénane sulfatase à partir du culot de 25 culture obtenu à l'étape (bl). L'étape (b) d'obtention de la 4S-iota-carraghénane sulfatase à partir du milieu de culture peut être réalisée selon différentes techniques de purification bien connues de l'homme de l'art. Il en va de même pour l'étape (b2) d'obtention de la 4S-iota- 30 carraghénane sulfatase à partir du surnageant et/ou du culot de culture. Il s'agit en général de purifier la protéine, en l'occurrence la 4S-iota-carraghénane sulfatase. Les techniques de purification les plus couramment utilisées font appel à des méthodes chromatographiques, telle que la chromatographie d'interactions hydrophobes (par exemple sur colonne de phényle sépharose), et/ou la chromatographie sur colonne échangeuse d'anions. De préférence, les méthodes chromatographiques sont mises en oeuvre successivement. De manière encore plus préférée, on utilise d'abord la chromatographie d'interactions hydrophobes puis la chromatographie sur colonne échangeuse d'anions. Souvent, entre ces étapes successives de purification, il convient d'éliminer les sels ou produits utilisés dans les chromatographies. On utilise pour ce faire une dialyse et/ou une ultrafiltration. De préférence, après la chromatographie d'interactions hydrophobes, les différentes fractions collectées sont dialysées puis testées pour leur capacité à désulfater le iota-carraghénane (dosage de l'activité sufatase). Les fractions capables de désulfater le iota-carraghénane sont rassemblées et dialysées, puis l'échantillon obtenu est purifié sur une colonne échangeuse d'anions. Puis les différentes fractions collectées sont testées pour leur capacité à désulfater le iota-carraghénane (dosage de l'activité sulfatase). On peut également analyser le degré de pureté des différentes fractions par électrophorèse sur gel de polyacrylamide, la bande correspondant à la 4S-iotacarraghénane sulfatase étant alors de 110 kDaltons environ. De préférence, le procédé d'obtention de la 4S-iota-carraghénane sulfatase selon la présente invention comprend, après l'étape (b) (ou l'étape b2), l'étape additionnelle suivante : (c) le dosage de l'activité de la 4S-iota-carraghénane sulfatase. Le dosage de l'activité de la 4S-iota-carraghénane sulfatase est réalisé par dosage du sulfate libéré. Pour cela, l'échantillon à doser (différentes fractions séparées ou rassemblées) est incubé avec le carraghénane, avantageusement le iota-carraghénane, de préférence à une concentration 1,2 %, de préférence volume à volume. Après un temps d'incubation minimum nécessaire, avantageusement au moins 15 heures, et à une température comprise entre 25 et 37°C, le mélange réactionnel est de préférence dilué, puis est centrifugé (microcons 10, Amicon). Puis la quantité de sulfate présente dans le filtrat est avantageusement dosée par chromatographie haute performance échangeuse d'anions. En dernier lieu, la détection des anions peut être réalisée par conductimétrie. Pour cela, on utilisera de préférence un détecteur du type ED40 (Dionex) muni d'un suppresseur ASRSD ultra-II-4 mm. Selon un autre aspect, la présente invention a pour objet un procédé d'extraction d'une 4S-iota-carraghénane sulfatase à partir d'une population d'algues rouges marines, comprenant : (i) l'isolement d'une population bactérienne susceptible de contenir la 4S- iota-carraghénane sulfatase à partir de la population d'algues rouges marines ; et (ii) l'obtention de la 4S-iota-carraghénane sulfatase à partir de la population bactérienne obtenue à l'étape (i), selon le procédé tel que défini ci-dessus. L'isolement d'une population bactérienne, telle qu'une population bactérienne susceptible de contenir la 4S-iota-carraghénane sulfatase, à partir d'une population d'algues marines est bien connue de l'homme de l'art et est notamment décrite dans Potin et al., 1991. Selon encore un autre aspect, la présente invention a pour objet un procédé de conversion d'une composition contenant du iota-carraghénane et/ou du iotacarraghénane hybride, en une composition qui contient de l'alpha-carraghénane et/ou de l'alpha-carraghénane hybride, comprenant les étapes suivantes : (a) la mise en présence de la composition contenant du iota-carraghénane et/ou du iota-carraghénane hybride, avec une solution contenant un polypeptide isolé comprenant une séquence amino-acide ayant au moins 65 % d'identité avec la séquence SEQ ID N°2 ou la séquence SEQ ID N°4, dans des conditions appropriées pour la conversion de la composition, et (b) le cas échéant, la récupération de la composition contenant l'alpha- carraghénane et/ou l'alpha-carraghénane hybride obtenue à l'étape (a). Le polypeptide isolé comprenant une séquence amino-acide ayant au moins 65 % d'identité avec la séquence SEQ ID N°2 ou la séquence SEQ ID N°4 ainsi que ses modes de réalisation préférés sont tels que définis ci-dessus. Dans la présente invention, on entend par � composition contenant du iota- carraghénane et/ou du iota-carraghénane hybride � une solution, une solution partiellement gélifiée ou un gel contenant ledit iota-carraghénane et/ou iota- carraghénane hybride. En effet, il convient de noter que, dans des conditions expérimentales telles que celles de l'invention, le iota-carraghénane pur gélifie sous ses propres charges. Ainsi dans les conditions expérimentales, on ne peut pas parler stricto sensu de solution. De plus, dans des conditions très diluées, le iota-carraghénane ne gélifie pas. Toutefois, des solutions peuvent être obtenues avec du iota-carraghénane pour des températures plus élevées, c'est-à-dire en général supérieures à 40°C. Par ailleurs, les propriétés de gélification sont modulées par la structure des carraghénanes hybrides. Ainsi, par exemple, le iota-nu-carraghénane étant peu gélifiant, on pourra l'avoir plus facilement sous forme de solution. Il en va de même pour les oligo-iotacarraghénanes. Dans la présente invention, on entend par � iota-carraghénane � un composé constitué d'au moins un motif iota-carrabiose (n = 1) (cf. schéma 1 ci-dessus). De préférence, il s'agira d'un oligo-iota-carraghénane (1 20). Egalement, on entend par � iota-carraghénane hybride � un composé constitué d'au moins un motif iota-carrabiose (n = 1) et d'au moins un motif carrabiose autre que iota-carrabiose (m = 1), tel que, sans toutefois s'y limiter, un motif nu-carrabiose, kappa-carrabiose, mu-carrabiose ou alpha-carrabiose. De préférence, il s'agira d'un oligo-iota-carraghénane hybride (1 20) (copolymère). Egalement dans la présente invention, on entend par � composition contenant de l'alpha-carraghénane et/ou de l'alpha-carraghénane hybride � une composition qui contient un iota-carraghénane ou un iota-carraghénane hybride dans lequel au moins un motif iota-carrabiose est converti en motif alpha-carrabiose. La conversion, au moins partielle, ou totale, de la composition contenant du iota-carraghénane et/ou du iotacarraghénane hybride en une composition contenant de l'alpha-carraghénane et/ou de l'alpha-carraghénane hybride, dépend des conditions expérimentales, c'est-à-dire de la concentration d'enzyme, de substrat, la température, et du temps de mise en présence avec l'enzyme. De préférence, l'ensemble des motifs iota-carrabiose présents dans le iota-carraghénane et/ou le iota-carraghénane hybride sont convertis en motifs alphacarrabiose. L'étape (b) est facultative. En effet, pour une analyse expérimentale, il n'est pas nécessaire de séparer la solution contenant la 4S-iota-carraghénane-sulfatase de la composition obtenue contenant l'alpha-carraghénane et/ou l'alpha-carraghénane hybride. Par contre, cette séparation serait nécessaire dans d'autres applications comme en biomédicale, auquel cas on pourrait par exemple utiliser l'ultra-filtration. Avantageusement, à l'étape (a), on ajoute de la solution contenant le polypeptide dans le milieu réactionnel afin d'augmenter le taux de conversion. Les conditions appropriées pour la conversion de la composition contenant du iota-carraghénane et/ou du iota-carraghénane hybride (substrat) en une composition contenant de l'alpha-carraghénane et/ou de l'alpha-carraghénane hybride incluent la température, avantageusement entre 25 et 37°C, le temps de mise en présence de la composition contenant le substrat avec la solution contenant l'enzyme, avantageusement de 12 à 25 heures, et la concentration en enzyme et en substrat. De préférence, on mélange l'enzyme et le substrat volume à volume. La présente invention a également pour objet un procédé de conversion d'une composition contenant du iota-carraghénane et/ou du iota-carraghénane hybride présent dans une population d'algues rouges, en une composition qui contient de l'alphacarraghénane et/ou de l'alpha-carraghénane hybride, comprenant les étapes suivantes : (a) la mise en présence de la population d'algues rouges avec une solution contenant un polypeptide isolé comprenant une séquence amino-acide ayant au moins 65 % d'identité avec la séquence SEQ ID N°2 ou la séquence SEQ ID N°4, dans des conditions appropriées pour la conversion de la composition contenant le iotacarraghénane et/ou le iota-carraghénane hybride présent dans une population d'algues rouges, et (b) le cas échéant, la récupération de la composition contenant l'alphacarraghénane et/ou l'alpha-carraghénane hybride obtenue à l'étape (a). De préférence, la composition contenant du iota-carraghénane et/ou du iotacarraghénane hybridee est mise en présence avec une solution contenant un polypeptide isolé comprenant ou consistant en la séquence amino-acide choisie dans le groupe constitué par la séquence SEQ ID N°2 et la séquence SEQ ID N°4. La composition contenant du iota-carraghénane et/ou du iota-carraghénane hybride peut être obtenue à partir d'algues rouges marines, ou bien dans le commerce, notamment auprès de CP Kelco, Cargill, ou auprès de Sigma. L'invention a également pour objet l'utilisation d'un polypeptide isolé comprenant une séquence amino-acide ayant au moins 65 % d'identité avec la séquence SEQ ID N°2 ou la séquence SEQ ID N°4, pour la préparation d'un agent de texture comprenant de l'alpha-carraghénane et/ou de l'alpha-carraghénane hybride. L'agent de texture peut être utilisé en industrie agro-alimentaire, parapharmacie et cosmétique. L'invention a également pour objet l'utilisation d'un polypeptide isolé comprenant une séquence amino-acide ayant au moins 65 % d'identité avec la séquence SEQ ID N°2 ou la séquence SEQ ID N°4, pour la préparation d'un agent gélifiant comprenant de l'alpha-carraghénane et/ou de l'alpha-carraghénane hybride. L'invention a encore pour objet l'utilisation d'un polypeptide isolé comprenant une séquence amino-acide ayant au moins 65 % d'identité avec la séquence SEQ ID N°2 ou la séquence SEQ ID N°4, pour la préparation d'un agent épaississant comprenant de l'alpha-carraghénane et/ou de l'alpha-carraghénane hybride. Selon un autre aspect, la présente invention a pour objet l'utilisation d'un polypeptide isolé comprenant une séquence amino-acide ayant au moins 65 % d'identité avec la séquence SEQ ID N°2 ou la séquence SEQ ID N°4, pour la conversion partielle ou totale d'une composition contenant du iota-carraghénane et/ou du iota-carraghénane hybride, en une composition qui contient de l'alpha-carraghénane et/ou de l'alphacarraghénane hybride. De préférence, la séquence amino-acide est choisie dans le groupe constitué par la séquence SEQ ID N°2 et la séquence SEQ ID N°4. Egalement de manière préférée, la composition contenant du iota-carraghénane 25 et/ou du iota-carraghénane hybrideest obtenue à partir d'algues rouges marines. La présente invention a pour objet un polypeptide isolé comprenant ou consistant en une séquence amino-acide ayant au moins 65 % d'identité avec la séquence SEQ ID N°2 ou la séquence SEQ ID N°4, à l'exclusion du polypeptide de séquence SEQ ID 30 N°5. Les exemples et figures qui suivent permettent d'illustrer la présente invention sans toutefois en limiter la portée. LEGENDES DES FIGURES Figure 1 : SDS-PAGE (12%). Le marqueur de taille (M) est un mélange commercial 10 (BioRad Précision) de 8 protéines caractérisées par des poids moléculaires compris entre 250 et 10kD. Figure 2: Structure primaire de la protéine hypothétique Q3IKL4 de Pseudoalteromonas haloplanktis. En gras encadré trait plein ou gras souligné les peptides déduits des expériences des LC/MS-MS (gras et encadré trait plein) ou de de 15 • novo (gras et souligné). En gras et encadré trait pointillé, les peptides prédits par les expériences de MALDI. Figure 3 : Spectres RMN du proton enregistrés sur du iota-carraghénane incubé avec la 4S-iota-caraghénane sulfatase purifiées qui conduit à la formation de l'alphacarraghénane. Courbe �T=0 � : iota-carraghénane avant ajout de l'enzyme ; courbe �+ 20 Enz (* 1) � : après 15 heures d'incubation à 35°C ; courbe �+ Enz (*3) � : après 96 heures d'incubation à 35°C et addition d'un volume supplémentaire d'enzyme. 25 EXEMPLES Exemple 1 : Introduction L'objectif des Inventeurs a été d'identifier et de purifier une sulfatase capable de 30 convertir partiellement ou complètement le iota-carraghénane en alpha-carraghénane. Pour parvenir à cette fin, les Inventeurs ont, dans un premier temps, développé un protocole pour cultiver la souche bactérienne Pseudoalteromonas carrageenovora 95 (ATCC 43555). Cette bactérie marine est en effet connue pour dégrader certains polysaccharides extraits des algues rouges : les carraghénanes. Plusieurs carraghénanehydrolases, ou carraghénases, issues de cette bactérie ont été identifiées et caractérisées au laboratoire. Après un criblage de l'activité sulfatase dans différentes conditions expérimentales, les Inventeurs ont ensuite développé un protocole pour purifier à l'homogénéité l'enzyme capable de désulfater le iota-carraghénane en alphacarraghénane. Exemple 2 : Matériel et méthodes 2.1 Dosage et identification de l'activité sulfatase : a) Réaction de désulfatation 1 volume d'échantillon (200 à 500�l) à doser est incubé avec 1 volume de iotacarraghénane (CP Kelco, Cargill) à une concentration de 1,4 % dans de l'eau. Pour chaque réaction enzymatique, un blanc est réalisé dans des conditions similaires mais en utilisant l'extrait enzymatique préalablement inactivé par ébullition durant minimum 10 minutes à 100°C. Après 15 à 20 d'heures d'incubation à une température comprise entre 25 et 37°C, le mélange réactionnel est dilué 2 fois dans de l'eau milliQ (Millipore) avant d'être centrifugé dans des microcons 10 (Amicon). La centrifugation est réalisée à 3300g pendant 60 à 90 minutes à une température comprise entre 20 et 40°C. b) Dosage du sulfate libéré La quantité de sulfate présente dans le filtrat est alors dosée par chromatographie échangeuse d'anions (HPAEC : high performance anion exchange chromatography) à l'aide d'un système Dionex DX 500 (Dionex Corporation, Sunnyvale, CA, USA). La séparation des anions présents dans l'échantillon est réalisée grâce à une colonne de type Ion-Pac AS11 (4 x 200 mm ; Dionex) équipée d'une pré-colonne de type AG-11 (4 x 50 mm, Dionex). Colonne et précolonne sont préalablement équilibrées dans 12 mM NaOH. L'élution des anions est réalisée à un débit de lml/min (pompe GP40, dionex). La détection des anions est réalisée par conductimétrie avec un détecteur ED40 (Dionex) muni d'un suppresseur ASRSD ultra-II- 4 mm (Dionex) fonctionnant sous un courant de 100 mA. c) Analyse par RMN du proton L'identification du produit formé au cours de la réaction de désulfatation est réalisée par RMN. Dans ce cas, la réaction de désulfatation est réalisée en incubant 1 ml d'échantillon avec 500 gl d'une solution de iota-carraghénane (X-6908 ; CP-Kelco) à 1,2 % dans l'eau. Le mélange est incubé pendant au moins 16 heures à 35°C. Les blancs sont réalisés de manière similaire mais avec des échantillons inactivés 30 minutes à 100°C avant l'incubation à 35°C. Après incubation, les échantillons sont lyophilisés puis échangés dans de l'eau deutérée (D20, 2 cycles échange/lyophilisation) avant d'être analysés en RMN (Service de RMN de l'Université de Bretagne Occidentale, Brest, N. Kervarec) (voir point 3.2.c) ci-dessous). 2.2 Culture bactérienne : Pour un criblage préliminaire de l'activité sulfatase, la souche bactérienne Pseudoalteromonas carrageenovora 9 de l'American Type Culture Collection (ATCC 43555) a été ensemencée dans du milieu Zobell. La composition du milieu Zobell est la suivante : Bacto peptone (Difco) 5g Extrait de levure (Difco) 1g Eau de mer filtrée 800 ml Eau osmosée 200 ml Afin d'induire potentiellement une activité sulfatase, les cultures bactériennes (5x 1000 ml) sont réalisées en présence de différents carraghénanes (1 g/l) dans un agitateur de type New Brunswick sous une agitation comprise entre 150 et 200 rpm. Après 36-40 heures d'incubation à une température comprise entre 15 et 20°C, le milieu de culture est centrifugé entre 7500 et 9800 g pendant 30-60 minutes. L'activité enzymatique est mesurée sur le surnageant et sur le culot de culture. Avant de tester son activité, le surnageant de culture est préalablement concentré par ultrafiltration sur une membrane dont le seuil d'exclusion est de 10 kD. Le filtrat obtenu dont le volume est d'environ 200 à 300 ml est davantage concentré par précipitation à saturation en sulfate d'ammonium (65g de sulfate d'ammonium/100 ml d'échantillon). Après centrifugation, le culot obtenu est remis en suspension dans un volume minimum de tampon 50 mM Tris HCL pH 8.3 et dialysé au moins 72 heures contre ce 5 tampon. Le culot de culture est remis en suspension pendant environ 1 heure dans 30 à 50 ml de tampon 50 mM Tris (Sigma) HC1 pH 8.3. Les cellules sont ensuite lysées à l'aide d'une presse de French. Une centrifugation à 25- 29000g pendant 40 à 60 minutes est réalisée pour éliminer les débris cellulaires. 10 Pour la production de 4S-carraghénane sulfatases, les cultures (5X 1 L) sont réalisées dans des conditions similaires mais l'induction de la production de sulfatase est réalisée en présence de lambda carraghénane (lg/l) (voir point 3.1 ci-dessous). 15 2.3 Purification de la sulfatase Sauf indications contraires, toutes les étapes décrites dans ce paragraphe sont réalisées à 4°C. En fin de culture, le milieu de culture est centrifugé pendant 30-60 minutes entre 20 7500 et 9800 g. Le culot obtenu est remis en suspension dans 30 à 50 ml de tampon 50 mM Tris (Sigma) HC1 pH 8.3. Une pastille de Complete EDTA-free (Roche) est ajoutée. Les cellules sont lysées avec une presse de French (Aminco). Après centrifugation, le surnageant ainsi obtenu est ensuite amené à 30% de saturation (16,4 g/100 ml) de sulfate d'ammonium. 25 Après une centrifugation (25 à 29000g ; 40 à 60 min.), le surnageant est ensuite déposé sur une résine de Phényle sépharose 6 FF high sub (GE Healthcare) (19.5x 2 cm) préalablement équilibrée dans du tampon 50 mM Tris HC1 (pH 8.3) saturé à 30% de sulfate d'ammonium (16.4g/100ml). La résine est lavée avec ce tampon jusqu'à ce que l'absorbance à 280 nm soit négligeable. Les protéines sont ensuite éluées avec un 30 gradient décroissant de sulfate d'ammonium. En 20 volumes de colonne, on passe de 30 % à 0 % de saturation en sulfate d'ammonium. Les fractions (6,5 ml) capables de désulfater le iota-carraghénane sont rassemblées et dialysées à l'aide de membranes SpectraPor dont le cut-off est de 3500 daltons. La dialyse est effectuée dans du tampon 50 mM tris HCl (pH 8,3). L'échantillon est ensuite déposé sur une résine échangeuse d'anions de type DEAE Sépharose FF (GE Healthcare) (13x 1.6 cm) préalablement équilibrée dans du tampon 50 mM Tris HC1 (pH8.3). Après lavage de la résine avec ce même tampon, les protéines sont éluées avec un gradient croissant de NaCl. La concentration finale de 1M en NaCl est atteinte en 20 volumes de colonne. Les différentes fractions collectées durant l'élution (vol. : 5.5 ml) sont testées pour leur capacité à désulfater le iota carraghénane. Le degré de pureté des différentes fractions est également analysé par électrophorèse sur gel de polyacrylamide (SDS-PAGE) (Laemmli and Favre, (1973) J. Biol. Chem.. 80, 575- 599). Exemple 3 : Résultats et discussion 3.1 Culture bactérienne : Criblage de l'activité sulfatase Comme le montre le tableau 3 ci-dessous, la présence de iota-, de lambda- ou de nu-carraghénane dans le milieu de culture induit à des degrés divers la production de sulfatase active sur le iota- et sur le nu-carraghénane. Tableau 3 : Activité sulfatase dans les surnageants et les culots de culture après 25 induction avec du iota, du nu ou du lambda carraghénane. Activité sulfatase sur le Culture induite avec du Iota-carraghénane IotafNu-carraghénane Iota-carraghénane + - + + Surnageant de culture Culot de culture Lambda-carraghénane Surnageant de culture - - Culot de culture +++ ++ Nu-carraghénane Surnageant de culture ++ - Culot de culture ++ ++ Pour une production optimale d'enzyme, on peut constater que c'est le lambda carraghénane qui s'avère le plus efficace. En effet, l'activité observée avec ce 5 carraghénane est environ 3 fois supérieure à celle observée lorsqu'on utilise le iota- carraghénane comme inducteur. 3.2 Purification et caractérisation de la 4S-iota-sulfatase 10 a) Purification La chromatographie d'interactions hydrophobes (i.e. phényle sépharose) est une étape importante car elle nous permet d'éliminer une grande partie des autres protéines présentes dans le culot de bactéries. En effet, la sulfatase élue entre 17 et 15 % de saturation en sulfate d'ammonium tandis que les autres protéines éluent lorsque la 15 concentration en sulfate d'ammonium est inférieure à ces valeurs, voire nulle. Toutes les fractions qui présentent une activité sulfatase sur le iota carraghénane sont rassemblées et dialysées pendant au moins 72 heures. L'échantillon dialysé (environ 140 ml) est ensuite purifié par chromatographie sur une résine échangeuse d'anions. La mesure de l'activité enzymatique des différentes fractions récoltées (80) 20 montre que la sulfatase élue lorsque la concentration en NaCl est comprise entre 300 et 430 mM. Le maximum d'activité sulfatase est en fait observé dans les fractions sulfatases qui éluent avec une concentration de NaCl comprise entre 340 et 370 mM. L'analyse électrophorétique en conditions dénaturantes de ces fractions montre que la 4S-iota-cararghénane sulfatase se présente sous forme d'une protéine unique dont le 25 poids moléculaire est d'environ 110 kD (voir Figure 1). b) Détermination de la séquence peptidique Afin de déterminer la séquence peptidique de la sulfatase, la bande correspondant à la protéine a été découpée et soumise à une digestion trypsique. Les peptides obtenus ont été purifiés et analysés par spectrométrie de masse sur la plate- forme RIO "Biopolymères" localisée à l'INRA de Nantes. Les données LC-MS/MS confrontées à la banque TrEMBL ont montré une très grande homologie de séquence avec la protéine Q3IKL4 de P. haloplanktis (voir Figure 2). Cette séquence a ensuite été utilisée pour créer une banque à laquelle ont été confrontées les données MALDI : La plupart des peptides majeurs (sauf 5) du spectre MALDI ont été identifiés dans cette séquence. Les peptides mesurés en LC-MS/MS et non identifiés dans la séquence Q3IKL4 ont été séquencés par spectrométrie de masse ("de novo") : tous ces fragments correspondent à des morceaux de séquence que l'on retrouve dans Q3IKL4 (avec quelques différences qui expliquent pourquoi ces peptides n'ont pas été identifiés sur la base des informations masse+séquence). La séquence protéique Q3IKL4 (SEQ ID N°5) correspond à une protéine hypothétique de la bactérie marine Pseudoalteromonas haloplanktis dont le génome a été entièrement séquencé. P. haloplanktis est phylogénétiquement proche de P. carrageenovora ce qui suppose que ces deux bactéries partagent des activités enzymatiques et des gènes en commun. c) Analyse du produit de la réaction de désulfatation Voir le protocole au point 2.1.c) ci-dessus La figure 3 montre le spectre du proton enregistré sur du iota-carraghénane avant (A) et après incubation (B et C) avec la sulfatase. Comme le montre cette figure, l'enzyme est capable de convertir progressivement le iota-carraghénane (caractérisé par un déplacement chimique à 5.32 ppm ù courbe A de la figure 3) en alpha-carraghénane (caractérisé par un déplacement chimique à 5.25 ppm). La conversion complète (courbe C de la figure 3) est cependant très lente (96 heures) et nécessite l'addition d'un volume d'enzyme. La technique de RMN 2D (HMQC) a permis de confirmer que le produit formé après 96 heures d'incubation était de l'alpha-carraghénane. REFERENCES BIBLIOGRAPHIQUES Falshaw et al, 1996, Carbohydrate research, 285, 82-98 Michel et al, Appl Microbiol Biotechnol. 2006 Jun;71(1):23-33. Epub 2006 Mar 21. Review Potin et al, Eur J Biochem. 1991 Oct 1;201(1):241-7. Zablackis et Santos, 1986, Botanica marina, 29, 319-322 15 REVENDICATIONS1. Polypeptide isolé comprenant une séquence amino-acide ayant au moins 95 % 5 d'identité avec une séquence amino-acide d'une 4-S-iota-carraghénane sulfatase choisie dans le groupe constitué par les séquences SEQ ID N°2 et SEQ ID N°4. 2. Polynucléotide isolé choisi parmi les polynucléotides suivants : a) un polynucléotide, ADN ou ARN, codant le polypeptide selon la 10 revendication 1 ; et b) un polynucléotide complémentaire d'un polynucléotide tel que défini en a). 3. Polynucléotide selon la revendication 2, qui code le polypeptide selon la revendication 1 et comprend une séquence nucléotidique ayant au moins 65 % d'identité 15 avec la séquence SEQ ID N°1 ou la séquence SEQ ID N°3. 4. Polynucléotide selon la revendication 3, dans lequel la séquence nucléotidique est choisie dans le groupe constitué par la séquence SEQ ID N°1 et la séquence SEQ ID N°3. 20 5. Vecteur comprenant un polynucléotide selon l'une des revendications 2 à 4. 6. Cellule hôte comprenant un vecteur selon la revendication 5. 25 7. Procédé de production d'un polypeptide selon la revendication 1 comprenant les étapes suivantes : a) la culture dans un milieu et conditions de culture appropriés d'une population de cellules hôtes selon la revendication 6 ; et b) la récupération dudit polypeptide ainsi produit à partir du milieu de culture ou 30 de la population de cellules hôtes cultivées. 8. Procédé d'obtention d'une 4S-iota-carraghénane sulfatase à partir d'une population bactérienne susceptible de contenir la 4S-iota-carraghénane sulfatase comprenant : (a) la mise en culture de la population bactérienne dans un milieu et 5 conditions de culture appropriés pour l'obtention de la 4S-iota-carraghénane sulfatase dans le milieu de culture, et (b) l'obtention de la 4S-iota-carraghénane sulfatase à partir du milieu de culture obtenu à l'étape (a). 10 9. Procédé d'obtention selon la revendication 8, dans lequel la population bactérienne susceptible de contenir la 4S-iota-carraghénane sulfatase est une population bactérienne Pseudoalteromonas, avantageusement une population bactérienne Pseudoalteromonas haloplanktis et/ou Pseudoalteromonas carrageenovora. 15 10. Procédé d'obtention selon la revendication 9 dans lequel à l'étape (a), lorsque la population bactérienne est une population bactérienne Pseudoalteromonas carrageenovora, le milieu de culture contient en outre du lambda-carraghénane. 11. Procédé d'obtention selon la revendication 10, dans lequel l'étape (b) inclut les 20 sous-étapes suivantes : (bl) la centrifugation du milieu de culture obtenu à l'étape (a), et (b2) l'obtention de la 4S-iota-carraghénane sulfatase à partir du culot de culture obtenu à l'étape (b 1). 25 12. Procédé d'obtention selon l'une des revendications 8 à 1l qui comprend, après l'étape (b), l'étape additionnelle suivante : (c) le dosage de l'activité de la 4S-iota-carraghénane sulfatase. 13. Procédé d'extraction d'une 4S-iota-carraghénane sulfatase à partir d'une 30 population d'algues rouges marines, comprenant : (i) l'isolement d'une population bactérienne susceptible de contenir la 4S-iota-carraghénane sulfatase à partir de la population d'algues rouges marines ; et(ii) l'obtention de la 4S-iota-carraghénane sulfatase à partir de la population bactérienne obtenue à l'étape (i), selon le procédé défini dans l'une des revendications 8 à 12. 14. Procédé de conversion d'une composition contenant du iotacarraghénane et/ou du iota-carraghénane hybride, en une composition qui contient de l'alpha-carraghénane et/ou de l'alpha-carraghénane hybride, comprenant les étapes suivantes: (a) la mise en présence de la composition contenant du iota-carraghénane et/ou du iota-carraghénane hybride, avec une solution contenant un polypeptide isolé comprenant une séquence amino-acide ayant au moins 65 % d'identité avec la séquence SEQ ID N°2 ou la séquence SEQ ID N°4, dans des conditions appropriées pour la conversion de la composition, et (b) le cas échéant, la récupération de la composition contenant l'alpha-15 carraghénane et/ou l'alpha-carraghénane hybride obtenue à l'étape (a). 15. Procédé de conversion selon la revendication 14, dans lequel, à l'étape (a), on ajoute de la solution contenant le polypeptide dans le milieu réactionnel afin d'augmenter le taux de conversion. 16. Procédé selon la revendication 14 ou 15, dans lequel la séquence amino-acide est choisie dans le groupe constitué par la séquence SEQ ID N°2 et la séquence SEQ ID N°4. 25 17. Procédé selon l'une des revendications 14 à 16, dans lequel la composition contenant du iota-carraghénane et/ou du iota-carraghénane hybride est obtenue à partir d'algues rouges marines. 18. Utilisation d'un polypeptide isolé comprenant une séquence amino-acide ayant 30 au moins 65 % d'identité avec la séquence SEQ ID N°2 ou la séquence SEQ ID N°4, pour la préparation d'un agent de texture comprenant de l'alpha-carraghénane et/ou de l'alpha-carraghénane hybride. 20