Brevet FR2928457A1 — publié le 20090911

PROCÉDÉ DE DÉTECTION ET DE QUANTIFICATION D'UNE MOLÉCULE COMPRENANT AU MOINS UNE FONCTION AMINE SUR UN SUPPORT SOLIDE DESCRIPTION DOMAINE TECHNIQUE La présente invention concerne le domaine des supports présentant une interface aminée et/ou protéique. Plus particulièrement, la présente invention vise à fournir un procédé et des moyens capables de caractériser l'interface aminée et/ou protéique de ces supports Le procédé selon l'invention est rapide, simple à mettre en oeuvre et réversible. Cette réversibilité permet une utilisation de l'interface après la mise du procédé de l'invention. Il présente une sensibilité et une linéarité de dosage remarquables, sans affecter l'interface aminée et/ou protéique ce qui permet l'utilisation post-caractérisation des supports ainsi recouverts. ÉTAT DE LA TECHNIQUE ANTÉRIEURE Il existe différents types de supports présentant à leur surface des groupements aminés et notamment des peptides, des polypeptides ou des protéines dans le domaine des réactifs utiles en biologie et, plus particulièrement, dans les domaines de la culture cellulaire, du diagnostic et des analyses biologiques. En effet, les supports présentant, à leur surface, une matrice constituée d'une (ou plusieurs) protéine(s) sont des supports notamment utilisés dans le cadre de la culture des cellules puisqu'ils favorisent l'adhésion des cultures cellulaires et, éventuellement, leur différenciation. De tels supports sont également connus sous le terme de � supports coatés �. Les supports du type puces à peptides, puces à protéines, puces à anticorps ou puces à cellules sont également des outils largement utilisés tant en recherche fondamentale qu'en recherche clinique. En effet, de tels supports sont utilisés pour évaluer une réponse immunitaire et, notamment, pour rechercher des anticorps spécifiques d'épitopes ou de mimotopes fixés sur ces derniers. La détection d'interactions moléculaires met également en oeuvre des supports de type puces à peptides / à protéines / à anticorps / à cellules. Lors de la préparation ou lors de l'utilisation de ces supports présentant à leur surface des groupements aminés, il est nécessaire de vérifier le greffage des fonctions amines dans un souci de vérification dudit greffage, de son homogénéité ou de sa stabilité. Le brevet US 6,696,304 propose un procédé pour déterminer la quantité moyenne relative d'une molécule comprenant au moins une amine, immobilisée sur un support solide. Ce procédé met en oeuvre (1) un (ou plusieurs) marqueur(s) émettant de la lumière et (2) des supports solides sur lesquels sont immobilisées des quantités connues de molécule(s) contenant une (ou plusieurs) amine(s), lesdits supports solides servant de références. Le procédé objet du brevet US 6,696,304 est, d'une part, irréversible comme indiqué colonne 10, lignes 29 à 32 et, d'autre part, lourd à mettre en oeuvre puisqu'il nécessite l'utilisation de standards. L'homme du métier connaît différentes techniques pour quantifier les protéines en solution comme la méthode de Lowry, la méthode de Bradford, la méthode de Biuret, etc.... Le bleu de Coomassie est l'agent de coloration utilisé dans la méthode de Bradford pour estimer, rapidement i.e. dans un temps inférieur à 5 min, la concentration protéique d'un milieu. La méthode de Bradford permet de réaliser des dosages de protéines en solution avec des seuils de détection de l'ordre du pg de protéines par mL de solution. Dans les conditions décrites par Bradford [Bradford, 1976] mettant en oeuvre une solution dont le pH est inférieur à 1, le complexe bleu-protéine formé entraîne un transfert du pic d'adsorption qui passe du rouge (Xmax = 470 nm, pH EXPOSÉ DE L'INVENTION La présente invention permet de résoudre le problème technique ci-dessus en proposant une nouvelle stratégie analytique basée sur le dosage direct d'un agent de coloration. Par � dosage direct �, on entend le dosage de l'agent de coloration � dégreffé � du support à caractériser après avoir fixé cet agent colorimétrique sélectivement sur l'amine présente à la surface du support puis éliminer l'excédent de l'agent de coloration. La présente invention vise à caractériser des supports aminés (bruts ou � coatés � c'est-à-dire des supports recouverts d'une interface). Par � caractérisation � dans le cadre de la présente invention, on entend non seulement la détection d'amine(s) éventuellement présente(s) à la surface d'un support solide mais aussi leur quantification i.e. la détermination du nombre d'amines disponibles en surface de ce support solide. Le nombre de fonctions amines sera exprimé par unité de surface ou par unité de masse du support. La présente invention est remarquable de par le fait qu'elle s'applique non seulement au domaine des supports coatés, des puces à peptides, à protéines, à anticorps ou à cellules mais aussi à tout domaine utilisant un support solide présentant à sa surface au moins une fonction amine. La présente invention concerne un procédé de détection et éventuellement de quantification d'au moins une molécule comprenant au moins une fonction amine immobilisée à la surface d'un support solide, ledit procédé étant un procédé direct, colorimétrique et mettant en oeuvre un agent de coloration. Plus particulièrement, la présente invention concerne un procédé de détection et éventuellement de quantification d'au moins une molécule comprenant au moins une fonction amine immobilisée à la surface d'un support solide, comprenant les étapes successives suivantes : a) mise en contact de ladite surface du support solide avec une solution T1 contenant un agent de coloration, b) élimination dudit agent de coloration n'ayant pas réagi avec ladite surface lors de l'étape (a), c) mise en contact de ladite surface avec une solution T2 apte à dissocier l'éventuel (ou les éventuels) complexe(s) formé(s) entre ledit agent de coloration et ladite molécule comprenant au moins une fonction amine, d) détection dudit agent de coloration éventuellement présent dans la solution T2 de façon à détecter et éventuellement quantifier ladite molécule comprenant au moins une fonction amine. Les principales étapes du procédé selon l'invention sont schématisées sur la figure 1 avec, comme agent de coloration, du bleu de Coomassie. Par � agent de coloration �, on entend, dans le cadre de la présente invention, un composé chimique présentant des propriétés d'absorption ou d'émission dans le domaine de la lumière visible. Par extension, on pourra également désigner par � agent de coloration � un composé présentant des propriétés d'absorption, d'émission ou de réémission dans un domaine plus large, allant du proche ultra-violet au proche infrarouge, c'est à dire dans une gamme de longueurs d'onde allant généralement de 280 à 3000 nm. De plus, l'agent de coloration susceptible d'être mis en oeuvre dans le cadre de la présente invention consiste en tout colorant avantageusement organique capable de réagir avec une molécule comprenant au moins une fonction amine. Les agents de coloration mis en oeuvre dans le cadre du procédé selon l'invention sont notamment choisis dans les familles des anthraquinones, des mono et dichlorotriazines, des dérivés (di)azo et des triphénylméthanes. Ces familles comprennent, entre autre, le Rouge Ponceau (ou Ponceau S)(CAS No. 6226-79-5), le Ponceau 2R (CAS No. 3761-53-3), Ponceau 4R (CAS No. 2611-82-7), Ponceau 6R (CAS No. 2766-77-0), l'azorubine (CAS No. 3567-69-9), le Procion Yellow 4R, le Procion rubine (CAS No. 17752-85-1), le Brilliant Blue FCF (CAS No. 3844-45-9), le Remazol Brilliant Blue (CAS No. 2580-78-1), le Fast Green FCF (CAS No. 2353-45-9), le Noir Amido (CAS No. 1064-48-8), le bleu de Procion (CAS No. 12236-82-7), le Serva Violet (CAS No. 910010-03-9), le Bleu de Coomassie (CAS No. 78642-64-5 ou CAS No. 6104-58-1) et leurs mélanges L'agent de coloration mis en oeuvre dans le cadre du procédé selon l'invention peut également être sélectionné parmi les agents fluorescents ou les agents phosphorescents. Ces agents fluorescents ou ces agents phosphorescents sont avantageusement des agents fluorescents ou des agents phosphorescents présentant au moins une fonction sulfonate et/ou au moins une fonction carboxylate. A titre d'exemples et de façon non exhaustive, on peut citer, parmi de tels agents fluorescents ou phosphorescents, les dérivés de la fluorescéine tels que la 6-carboxy-fluorescéine (CAS No. 3301-79-9) ; l'éosine Y (CAS No. 17372-87-1) ; l'éosine B (CAS No. 548-28-3) ; la rhodamine B (CAS No. 81-88-9), la sulforhodamine 101 (CAS No. 60311-02-6), la pyranine (CAS No. 6358-69-6) et la cardiogreen (Cas No 3599-32-4), etc... Un agent de coloration avantageusement mis en oeuvre dans le cadre de la présente invention est le Bleu de Coomassie. Ledit agent de coloration est choisi, plus particulièrement, dans le groupe constitué par le Bleu de Coomassie G250, le Bleu de Coomassie R250, le Bleu de Coomassie R150 et le Bleu de Coomassie R350. Avantageusement, la fonction amine mise en oeuvre dans le cadre de la présente invention est une fonction amine primaire du type (-NH2), une fonction amine secondaire du type (-NHR, R représentant un groupe carboné) ou une fonction amine tertiaire du type (-NR'R, R et R' représentant des groupes carbonés identiques ou différents, ou appartenant à un même groupe carboné (cas des amines cycliques)). De façon préférée, la fonction amine mise en oeuvre dans le cadre de la présente invention est une fonction amine primaire du type (-NH2) ou une fonction amine secondaire du type (-NHR, R représentant un groupe carboné). La molécule comprenant au moins une fonction amine susceptible d'être utilisée dans le cadre de la présente invention est n'importe quelle molécule présentant au moins une fonction amine connue de l'homme du métier. Cette molécule est notamment choisie dans le groupe constitué par les peptides, les polypeptides, les protéines, les protéines présentant des groupes prosthétiques (telles que glycoprotéines, lipoprotéines, nucléoprotéines, métalloprotéines, chromoprotéines, hémoprotéines), les anticorps, les acides nucléiques transaminés, les amines biogènes, les dendrons et les dendrimères tels que les structures dendrimériques de type PAMAM (PolyAMidoAMine) ou de type PPI (Poly(Propylenelmine)) ou les structures dendrimériques décrites dans la demande internationale WO 2006/114528), leurs fragments et leurs dérivés. A titre d'exemples de protéines susceptibles d'être mises en oeuvre dans le cadre de la présente invention et déjà utilisées comme protéines d'interface de surfaces coatées, on peut citer la streptavidine, la gélatine, le collagène et notamment le collagène de type 1, la fibronectine, le lysozyme, la polylysine linéaire, la sérum albumine bovine, etc.... Par ailleurs, des polymères aminés (de type polyacrylamide) ont également été utilisés comme protéines d'interface de surfaces coatées. La présente invention envisage d'utiliser des dérivés des molécules contenant une fonction amine définies ci-dessus. Par � dérivé �, on entend des molécules qui présentent 60%, 65%, 70%, 75%, 80%, 85%, 90% et/ou 95% d'identité avec les molécules comprenant au moins une fonction amine définies ci-dessus et notamment vis-à-vis des séquences de nucléotides ou des séquences d'acides aminés de ces molécules. Lorsque les molécules comprenant au moins une fonction amine présentent un (ou plusieurs) acide(s) aminé(s), leurs dérivés peuvent présenter au moins un acide aminé supplémentaire, une modification post-traductionelle et/ou une modification chimique (en particulier une glycosylation, une amidation, une acylation, une acétylation, une méthylation), ou un groupement protecteur qui permet d'éviter leur dégradation. Les dérivés des molécules contenant une fonction amine et présentant un (ou plusieurs) acide(s) aminé(s) peuvent également être ceux dont un (ou plusieurs) acide(s) aminé(s) est(sont) choisi(s) dans le groupe constitué par des énantiomères, des diastéréoisomères, des acides aminés naturels de conformation D, des bêta acides aminés, des acides aminés alpha substitués, des acides aminés rares notamment l'hydroxyproline, l'hydroxylysine, l'allohydroxylysine, la 6-N-méthyllysine, la N-éthylglycine, la N-méthylglycine, la N-éthylasparagine, l'alloisoleucine, la N-méthylisoleucine, la N-méthylvaline, la pyroglutamine, l'acide aminobutyrique et des acides aminés synthétiques notamment l'ornithine, la norleucine, la norvaline, la cyclohéxyl-alanine et les oméga-acides aminés. Les fragments des molécules comprenant au moins une fonction amine sont, à titre d'exemples et de façon non exhaustive : - des fragments peptidiques présentant 30 avantageusement plus de 5 acides aminés, notamment plus de 10 acides aminés ou encore plus de 15 acides aminés, - des fragments d'anticorps comportant au moins le domaine variable d'une chaîne lourde (VH) et/ou le domaine variable d'une chaîne légère (VL) d'une immunoglobuline classique, ou bien le domaine variable d'une immunoglobuline à chaîne unique, tel que les fragments Fab, Fv, scFv ou VHH, des fragments d'acides nucléiques transaminés présentant avantageusement plus de 5 nucléotides, notamment plus de 10 nucléotides ou encore plus de 15 nucléotides. Les molécules contenant une fonction amine, leurs dérivés et leurs fragments tels que précédemment définis peuvent être des produits naturels, des produits recombinants obtenus selon des techniques de biologie moléculaire et de génie génétique bien connues de l'homme du métier ou être synthétisés chimiquement selon des techniques telles que la synthèse en phase solide ou liquide également bien connues de l'homme du métier. Dans le cadre de la présente invention, tout support solide à la surface duquel une (ou plusieurs) molécule(s) comprenant au moins une fonction amine peu(ven)t être immobilisée(s) est susceptible d'être utilisé dans le cadre de la présente invention. Dans une variante de l'invention, le support solide ou du moins la surface dudit support solide où la (ou les) molécule(s) comprenant au moins une fonction amine est(sont) immobilisée(s), est notamment un support solide ou une surface inorganique. En effet, on peut envisager un support solide dont seule la surface est en un matériau inorganique particulier, le reste du support étant dans un autre matériau inorganique ou dans un matériau organique. Avantageusement, le support solide ou la surface dudit support solide est en un matériau inorganique choisi dans le groupe constitué par les verres, les quartz, les céramiques (par exemple, de type oxyde), les métaux (par exemple, aluminium, chrome, cuivre, zinc, argent, nickel, étain ou or), les métalloïdes (par exemple, silicium ou silicium oxydé) et leurs mélanges. Dans une autre variante de l'invention, le support solide ou du moins la surface dudit support solide où la (ou les) molécule(s) comprenant au moins une fonction amine est(sont) immobilisée(s) est en un matériau organique comme un polymère tel de l'agarose ou une résine incluant le nylon, le polyéthylène glycol, les polycarbonates, les polyfluoropolymères ou les composites. On peut également envisager un support solide dont seule la surface est en un matériau organique particulier, le reste du support étant dans un autre matériau organique ou dans un matériau inorganique. Ledit support solide peut se présenter sous diverses formes de taille variable. A titre d'exemples et de façon non exhaustive, il peut se présenter sous forme de lames, de microplaquettes, de particules, de gels tel qu'un gel d'agarose, de billes, de microbilles, de fibres, de tubes tels que des tubes à hémolyse ou de microcanaux de type capillaires. Ces différents types de support peuvent avoir des tailles variant de quelques centaines de micromètres à plusieurs centimètres. Dans une forme de mise en oeuvre particulière de la présente invention, le support solide présente une surface portant des groupements fonctionnels grâce auxquels la (ou les) molécule(s) comprenant au moins une fonction amine est(sont) capable(s) de s'immobiliser. De façon avantageuse, ces groupements fonctionnels sont choisis parmi les groupements carboxyliques, des entités radicalaires, les fonctions alcools, amines, amides, époxy ou thiols. Cette fonctionnalisation peut être intrinsèque à la nature du matériau en surface du support solide mis en oeuvre. De façon alternative, cette fonctionnalisation peut être obtenue par nettoyage de ladite surface par l'intermédiaire d'au moins un solvant, détergent, rayonnement ou plasma d'oxygène ou tout autre procédé permettant la formation de groupements fonctionnels tels que précédemment définis. Dans une première variante de la présente invention, la molécule comprenant au moins une fonction amine peut être immobilisée de façon directe à la surface du support solide fonctionnalisé ou non. Un support solide � coaté � avec une protéine est un exemple d'immobilisation directe. Dans une seconde variante de la présente invention, la molécule comprenant au moins une fonction amine peut être immobilisée de façon indirecte à la surface du support solide fonctionnalisé ou non. Cette immobilisation indirecte fait intervenir un bras espaceur (ou agent de jonction) lié, d'une part, au support solide et, d'autre part, à la molécule comprenant au moins une fonction amine. Le bras espaceur peut ou non réagir avec l'agent de coloration lors de l'étape (a) du procédé selon l'invention et notamment peut ou non présenter une fonction amine susceptible de réagir lors de ladite étape (a). L'homme du métier connaît différents exemples de tels bras espaceurs. De façon non exhaustive, peuvent être cités, en tant que bras espaceurs susceptibles d'être mis en oeuvre dans le cadre de la présente invention, le 1,6 diaminohexane, l'acide 6-aminohexanoïque, un groupe succinimide, un époxyde, l'acide UDP-glucuronique, des chaînes alkyles linéaires ou ramifiées de 1 à 20 atomes de carbone, du polyéthylène glycol, du glutaraldéhyde, etc... Les liaisons mises en oeuvre au cours d'une immobilisation directe ou indirecte peuvent être toutes liaisons connues de l'homme du métier et notamment des liaisons covalentes, des liaisons ioniques, des liaisons hydrogène, une adsorption, etc... La premiere étape du procédé selon l'invention (étape a), dite � de coloration � consiste à mettre en contact la surface susceptible de présenter une molécule comprenant au moins une fonction amine avec une concentration donnée d'agent de coloration. Ledit agent de coloration est dilué dans la solution T1. La solution T1 est une solution couramment 30 utilisée lors de coloration utilisant un des agents de coloration tels que précédemment définis, notamment lors de dosage en solution, de coloration de gels d'électrophorèse SDS-PAGE ou de coloration de membrane cellulosique. L'homme du métier saura donc en fonction de l'agent de coloration mis en oeuvre quelle solution T1 utiliser (nature et quantité des composants). Avantageusement, la solution T1 est une solution aqueuse comprenant un alcool et/ou un acide. Le pH de la solution T1 est avantageusement supérieur à 1 et, en particulier, supérieur à 2. L'alcool contenu dans la solution T1 est avantageusement choisi dans le groupe constitué par le méthanol, l'éthanol, le propanol, l'isopropanol, le butanol et leurs mélanges. La proportion d'alcool est comprise entre 1 et 25 %, notamment entre 2 et 20 % et, en particulier, entre 5 et 15 % en volume par rapport au volume total de solution T. L'acide contenu dans la solution T1 est avantageusement choisi dans le groupe constitué par l'acide acétique, l'acide trichloroacétique, l'acide phosphorique, l'acide chlorhydrique, l'acide sulfurique, l'acide perchlorique et leurs mélanges. La proportion d'acide est comprise entre 0,5 et 20 %, notamment entre 1 et 15 % et, en particulier, entre 2 et 10 % en volume par rapport au volume total de solution T. L'agent de coloration tel que précédemment défini est utilisé en une quantité comprise entre 0,001 et 1 %, notamment entre 0,005 et 0,5 % et, en particulier, entre 0,01 et 0,1 % en masse par rapport au volume total de solution T. L'étape (a) du procédé selon l'invention est avantageusement effectuée à températue ambiante (i.e. température comprise entre 20 et 25°C) et ce sous agitation. La durée de l'étape (a) selon l'invention est supérieure à 3 min, notamment supérieure à 5 min, en particulier, comprise entre 5 min et 2 heures, plus particulièrement, entre 5 min et 1 heure et, tout particulièrement, entre 5 et 30 min. A titre d'exemple et lorsque l'agent de coloration mis en oeuvre est du Bleu de Coomassie, la solution T1 est composée de 85% d'eau milliQ, 10% de méthanol de qualité analytique et 5% d'acide acétique de qualité analytique et son pH est de 2,2. Le bleu de Coomassie (G-250) est utilisé à 0,05 % en masse dans cette solution lors de l'étape de coloration. Pour qu'il y ait un maximum d'interactions du Bleu de Coomassie avec la molécule comprenant au moins une amine immobilisée sur un support solide et notamment avec lesdites amines, l'agent de coloration a été utilisé dans la solution T1 à une concentration C très supérieure à celle utilisée lors du dosage en solution par le test de Bradford. Cette concentration C égale ou supérieure à 500 pg/mL ne permet pas de dosage en solution car il y a alors saturation du signal d'absorbance lors de la lecture directe. Se placer à une concentration de 500 pg/mL de Bleu de Coomassie permet une réutilisation de la solution T. En outre, la solution T1 contenant une concentration élevée de Bleu de Coomassie évite des étapes de mise au point selon le format utilisé, elle peut donc être utilisée sur des formats possédant de plus importantes capacités de liaison que les formats de microplaques testées dans la présente invention. Sur la base de cet enseignement et de ses connaissances, l'homme du métier saura choisir une quantité d'agent de coloration, autre que le Bleu de Coomassie, adéquate pour obtenir les avantages cités ci-dessus. L'étape (b) du procédé selon l'invention vise à éliminer l'agent de coloration n'ayant pas réagi et notamment n'ayant pas formé de complexes avec la molécule comprenant au moins une fonction amine. Cette étape (b) consiste en une étape d'au moins un lavage. Avantageusement, l'étape (b) du procédé selon l'invention comprend un (ou plusieurs) lavage(s) de la surface du support solide sur laquelle est(sont) immobilisée (s) une (ou plusieurs) molécule (s) comprenant au moins une fonction amine, aux moyens de solutions de lavage identiques ou différentes. En particulier, l'étape (b) du procédé selon l'invention comprend au moins deux lavages, au moins trois lavages, au moins quatre lavages ou au moins cinq lavages de ladite surface du support solide. L'homme du métier saura aisément définir le nombre de lavages nécessaire et suffisant en fonction de l'agent de coloration et de sa concentration utilisés lors de l'étape (a) du procédé et en fonction de la (ou des) solution(s) de lavage employée(s). Ainsi, l'homme du métier pourra récupérer les solutions de lavage et vérifier notamment par une mesure spectrophotométrique la présence dans ces dernières d'agent de coloration. Dès que les solutions de lavage ne contiennent plus d'agent de coloration, l'étape (b) du procédé selon l'invention est achevée. Les lavages peuvent être effectués avec une solution de lavage identique ou différente. En effet, on peut envisager d'utiliser, lors de l'étape (b), une solution de lavage identique à chaque lavage, des solutions de lavage différentes d'un lavage à l'autre ou des solutions de lavage identiques ou différentes d'un lavage à l'autre. Les lavages peuvent présenter des durées identiques ou différentes ; ces durées s'étendant de quelques minutes (2, 3, 5, 10 ou 15 minutes) à une (ou plusieurs) heure(s) (1, 2, 3, 4, 5, ou 15 heures). L'étape (b) du procédé selon l'invention est avantageusement effectuée sous agitation et à température ambiante mais peut également être effectuée à une température inférieure à la température ambiante et notamment dans une chambre froide (température comprise entre 3 et 6°C). N'importe quelle solution de lavage connue de l'homme du métier est utilisable dans le cadre de l'étape (b) du procédé selon l'invention. La seule condition est que cette solution de lavage n'affecte ni l'immobilisation de la (ou des) molécule(s) comprenant au moins une fonction amine à la surface du support solide, ni les éventuels complexes formés entre l'agent de coloration mis en oeuvre à l'étape (a) et ladite molécule comprenant au moins une fonction amine. A titre d'exemples et de façon non exhaustive, la solution de lavage mise en oeuvre lors de l'étape (b) du procédé est choisie dans le groupe constitué par l'eau, l'eau distillée, l'eau déminéralisée, l'eau désionisée, un tampon phosphate salin (ou PBS), une solution saline (tel que NaCl), un tampon acétate (tel que AcONa), un tampon carbonate (tel que NH4HCO3 ou NaHCO3/Na2CO3), une solution aqueuse comprenant un alcool et/ou un acide (i.e. la solution T1 sans agent de coloration) telle que précédemment définie et leurs mélanges. Avantageusement, le premier lavage lors de l'étape (b) du procédé selon l'invention est précédé du retrait de la solution T1 contenant l'agent de coloration alors en contact avec la surface du support solide. Ce retrait peut être notamment effectué par tapotement, par absorption ou par aspiration. Dans une forme de mise en oeuvre particulière, le dernier lavage est effectué avec de l'eau et notamment de l'eau distillée, déminéralisée et/ou désionisée (du type eau purifiée sur le système Milli-Q� de la société Millipore ci-après désignée par � eau Milli-Q �). Après le dernier lavage de l'étape (b) du procédé selon l'invention, la surface du support solide peut être séchée avant la mise en contact avec la solution T2 lors de l'étape (c). L'analyse au spectrophotomètre du complexe agent de coloration/amine après l'étape (b) du procédé de l'invention n'a pas été concluante. En effet, les complexes entre la molécule comprenant au moins une fonction amine et l'agent de coloration notamment le Bleu de Coomassie n'ont pu être détectés au spectrophotomètre car inférieurs au seuil de détection de la méthode. Rappelons qu'en solution et dans les conditions de Bradford, la limite de détection avoisine le pg/mL, soit, pour des puits de microplaque, 0,15 pg/puits. Or, après immobilisation sur support solide d'une interface de molécules comprenant au moins une fonction amine d'un poids moléculaire de 21500 Da, les inventeurs ont calculé que selon un modèle simplifié la monocouche sur le fond du puits n'excéderait pas 0,02 pg. Des lectures directes du complexe molécule-Bleu de Coomassie sur le support solide ne sont donc pas envisageables. L'étape (c) du procédé selon l'invention dite de décoloration consiste à faire repasser en solution, grâce à une solution T2, l'agent de coloration ayant interagi avec la (ou les) molécule(s) comprenant au moins une fonction amine présente(s) à la surface du support. Cette étape rend le procédé de l'invention � réversible � en permettant une réutilisation du support après sa caractérisation. La solution T2 est donc une solution apte à dissocier les éventuels complexes entre l'agent de coloration et la (ou les) molécule(s) comprenant au moins une fonction amine présente(s) à la surface du support. La composition de la solution T2 a été optimisée de façon à décrocher la totalité de l'agent de coloration fixé sur la surface lors de l'étape (a) de coloration. Des tentatives pour dissocier les complexes entre l'agent de coloration et la molécule comprenant au moins une fonction amine, le support mis en oeuvre étant une plaque en polystyrène, ont été réalisées en utilisant des lavages intensifs avec soit de l'eau, des tampons acétate (AcONa), bicarbonate d'ammonium (NH4HCO3) et bicarbonate/carbonate de sodium (NaHCO3/Na2CO3) à diverses molarités et à des pH allant jusqu'à 11,5, des solutions salines (NaCl (3M)), des solutions mixtes NaCl/tampon carbonate, soit des solutions alcooliques allant jusqu'à 50% d'alcool (tel que du méthanol ou de l'acétonitrile (ACN)). Ces tentatives appliquées à des supports en polystyrène sont restées sans succès et n'ont pas permis de décrocher l'agent de coloration du support solide. Les mélanges en présence d'ACN ont été éliminés en raison de la faible résistance chimique à l'ACN de nombreux matériaux polymériques (notamment le polystyrène, matériau de base de nombreuses microplaques) susceptibles d'être utilisés pour le support solide ou sa surface. Les inventeurs ont démontré qu'une solution mixte eau/solvant organique appelée T2 permet de dissocier les complexes entre l'agent de coloration et la molécule comprenant au moins une fonction amine. De façon avantageuse, la solution T2 capable de décrocher l'agent de coloration de façon instantanée et quantitative est une solution aqueuse contenant un solvant organique et un élément choisi parmi la soude, la potasse, des ions carbonates et leurs mélanges. Le pH de la solution T2 est avantageusement supérieur à 9, notamment supérieur à 10, en particulier, supérieur à 11 et, plus particulièrement, supérieur à 11,25. Tout solvant organique connu de l'homme du métier est utilisable dans la solution T2 mise en oeuvre dans la présente invention. L'homme du métier saura, sans effort inventif, choisir le solvant organique le mieux adapté en fonction du support, de l'agent de coloration et des molécules portant une fonction amine mis en oeuvre. De façon préférée, le solvant organique mis en oeuvre dans la solution T2 est un alcool. L'alcool contenu dans la solution T2 est avantageusement choisi dans le groupe constitué par le méthanol, l'éthanol, le propanol, l'isopropanol et le butanol. La proportion d'alcool est compris entre 10 et 80 %, notamment entre 25 et 70 % et, en particulier, entre 40 et 60 % en volume par rapport au volume total de solution T2. La solution T2 comprend, en plus du solvant organique, de la soude (NaOH), de la potasse (KOH), des ions carbonate ou leurs mélanges. Les ions carbonate, ions hydroxyde, ions potassium ou les ions sodium contenus dans la solution T2 présentent une molarité comprise entre 0,001 et 1 M, notamment comprise entre 0,005 et 0,5 M, en particulier comprise 0,01 et 0,1 M. Les ions carbonate de la solution T2 mise en oeuvre dans le procédé selon l'invention se présentent avantageusement sous la forme de bicarbonate d'ammonium (NH4HCO3), de bicarbonate et carbonate de sodium (NaHCO3/Na2CO3) ou de potassium (K2CO3), etc... ou de leurs mélanges. L'étape (c) du procédé selon l'invention 30 est effectuée à une température comprise entre 4 et 50°C et plus avantageusement à 20°C et ce sous agitation. La durée de l'étape (c) selon l'invention est supérieure à 1 seconde et inférieure à 5 min. Le volume de solution T2 devra être sélectionné de façon à recouvrir totalement la surface à caractériser. Ce volume à introduire lors de l'étape (c) ne devra cependant pas être trop important afin d'éviter une dilution trop importante de l'agent de coloration et permettre son dosage lors de l'étape (d). L'étape (d) du procédé de l'invention consiste à détecter l'agent de coloration présent dans la solution T2 récupérée après l'étape (c) i.e. la solution T2 telle que précédemment définie comprenant en outre l'agent de coloration issu de la dissociation du complexe entre la molécule comprenant au moins une fonction amine et l'agent de coloration, lors de l'étape (c) du procédé. Avant l'étape (d), la solution T2 comprenant en outre l'agent de coloration récupéré lors de l'étape (c) peut avantageusement subir une acidification ou une basification. Cette étape supplémentaire permet notamment de modifier le pH de la solution T2 comprenant en outre l'agent de coloration récupéré lors de l'étape (c), afin de se placer dans des conditions optimales de pH en vue de la détection et éventuellement de la quantification dudit agent de coloration. La détection de l'agent de coloration lors de l'étape (d) du procédé selon l'invention consiste à mesurer la densité optique (ou absorbance) de la solution T2 obtenue après l'étape (c). La densité optique de cette solution est déterminée par un spectrophotomètre préalablement étalonné sur la longueur d'onde d'absorption de l'agent de coloration mis en oeuvre. Une telle détection est un travail de routine pour un homme du métier qui saura, en fonction de l'agent de coloration utilisé et du pH de la solution T2, à quelle longueur d'onde d'absorption la détection de l'étape (d) doit être réalisée. De plus, il est clair que, à la densité optique obtenue lors de l'étape (d) du procédé selon l'invention, on doit soustraire la densité optique obtenue, dans les mêmes conditions, en absence de la molécule comprenant au moins une fonction amine. Par � dans les mêmes conditions �, on entend dans le cadre de la présente invention, même support, mêmes étapes (a) à (d) i.e. mêmes solutions T1 et T2, agent de coloration et quantité utilisés identiques, même(s) tampon(s) de lavage, mêmes températures, durée et condition pour chacune des étapes. La valeur obtenue après ladite soustraction est appelée � densité optique réelle � ou � absorbance réelle �. La densité optique mesurée en absence de molécule(s) comprenant au moins une fonction amine permet d'apprécier le bruit de fond de la mesure et les complexes éventuellement formés entre l'agent de coloration et le support solide, ses éventuels groupements fonctionnels, les éventuels bras espaceurs et/ou des molécules comprenant au moins une fonction amine éventuellement immobilisées sur le support solide et différentes des molécules comprenant au moins une fonction amine pour lesquelles le procédé de détection et éventuellement de quantification selon l'invention est mis en oeuvre. Une densité optique obtenue lors de l'étape (d) du procédé selon l'invention en présence d'éventuelle (s) molécule(s) comprenant au moins une fonction amine supérieure à la densité optique obtenue, dans les mêmes conditions, en absence de molécule(s) comprenant au moins une fonction amine permet de conclure qu'au moins une molécule comprenant au moins une fonction amine est immobilisée à la surface du support solide. La quantification de la (ou des) molécule(s) comprenant au moins une fonction amine à partir de la densité optique réelle obtenue lors de l'étape (d) du procédé selon l'invention peut être obtenue à partir de courbes étalons ou par calcul, comme présenté ci-après avec le Bleu de Coomassie utilisé comme agent de coloration. Cette quantification est également un travail de routine pour l'homme du métier. A titre d'exemple et lorsque l'agent de coloration mis en oeuvre est du Bleu de Coomassie, la solution T2 est une solution composée à 50% de méthanol de qualité analytique et 50% d'une solution 0,1 M d'ions carbonate, avantageusement sous forme de bicarbonate/carbonate de sodium à un pH supérieur ou égal à 11,25. Dans ces conditions, le Bleu de Coomassie repasse en solution sous sa 4eme forme de couleur � violet-rose � ((Xmax autour de 530 nm, pH ? 11) peu évoquée jusqu'à présent dans la littérature. A notre connaissance, aucun dosage en solution d'une des 4 formes libres du Bleu de Coomassie n'a été reportée dans la littérature. Dans la solution T2, le Bleu de Coomassie libre présente une absorption maximale à 520 nm. Les mesures sont effectuées après ajout de 20 pL d' HCl (3 N) dans le tampon T2, le pH est alors de 6,1. La forme libre de le Bleu de Coomassie vire alors au bleu turquoise et présente une absorption maximale à 610 nm stable. Le nombre de molécules de Bleu de Coomassie détectées peut alors être corrélé à la densité d'amines disponibles sur la surface à caractériser puisque les complexes formés entre le Bleu de Coomassie et la molécule comprenant au moins une fonction amine sont plus particulièrement formés entre le Bleu de Coomassie et ladite fonction amine. Dans le but de quantifier le nombre d'amines présentes à la surface du support, les inventeurs ont réalisé des solutions étalons du Bleu de Coomassie dans la solution T2 (pH 6, 1, Xmax = 610 nm). La réponse est linéaire pour une concentration en Bleu comprise entre 0,5 et 15 pg/mL. La limite de quantification pour des puits de microplaques est alors de 25 ng/puits (coefficient de variation (CV) Dans le cas présent, la valeur de n est déterminée lors de la phase de décoloration de la présente invention c'est-à-dire lors du dosage du Bleu de Coomassie après décrochage dans la solution T2. Cette valeur est donc directement proportionnelle au nombre d'amines du support ayant réagi lors de l'étape (a) du procédé. En suivant un modèle mathématique à deux niveaux de concentration en bleu de Coomassie décrit par Atherton [Atherton, 1996], les inventeurs ont démontré, que dans les conditions de saturation, le pourcentage de sites occupés par le bleu de Coomassie sur un dendrimère de la lysine était de 91,7% pour la génération 2, 92,7% pour la génération 3, et 80,3% pour la génération 4 soit qu'il y a au plus une molécule de bleu par NH2. Sur la base de l'enseignement ci-dessus, l'homme du métier peut mettre en oeuvre la présente invention, sans effort inventif, en utilisant un agent de coloration autre que le Bleu de Coomassie et notamment un agent de coloration capable de former des complexes avec une molécule comprenant au moins une fonction amine sans que ladite fonction amine soit directement impliquée dans le complexe formé. Les applications de la présente invention colorimétrique sont multiples et variées. Ainsi, la présente invention concerne l'utilisation du procédé tel que précédemment défini pour comparer différentes stratégies (ou protocoles) d'immobilisation de molécules comprenant au moins une fonction amine sur des supports solides et susceptibles de générer des supports coatés, des puces à peptides, des puces à protéines, des puces à anticorps ou des puces à cellules. La présente invention concerne également l'utilisation du procédé tel que précédemment défini pour vérifier si les supports coatés, les puces à peptides, les puces à protéines, les puces à anticorps ou les puces à cellules répondent à tous les critères de qualité analytique. En effet, la présente invention permet de vérifier tous les critères de qualités analytiques que sont : - la stabilité du support recouvert d'une interface comprenant une ou des molécule(s) comprenant au moins une fonction amine aux cycles de lavage et/ou de coloration/décoloration de la présente invention, - la robustesse (répétabilité et reproductibilité) des greffages de ladite interface dans la fabrication de supports coatés, de puces à peptides, de puces à protéines, de puces à anticorps ou de puces à cellules (homogénéité intra et inter expériences), - la sensibilité par comparaison aux supports coatés, puces à peptides, puces à protéines, puces à anticorps ou puces à cellules commerciaux, etc.. La présente invention concerne aussi l'utilisation du procédé tel que précédemment défini pour détecter et éventuellement quantifier des molécules comprenant au moins une fonction amine et plus particulièrement des protéines, des anticorps ou leurs fragments présents dans un liquide d'intérêt. Par � liquide d'intérêt �, on entend dans le cadre de la présente invention un milieu de culture cellulaire, un fluide biologique préalablement isolé ou extrait du corps humain ou animal (du type sang, lymphe, urine, salive, sperme, etc...). La mise en oeuvre de cette application particulière comprend les étapes successives suivantes . préparation d'un support solide présentant à sa surface au moins un antigène ou au moins un anticorps spécifique de la protéine, de l'anticorps ou de leurs fragments recherchés ; - mise en contact du support ainsi préparé avec le liquide d'intérêt ; - étape (a) du procédé selon l'invention telle que précédemment définie ; - étape (b) du procédé selon l'invention telle que précédemment définie ; - étape (c) du procédé selon l'invention telle que précédemment définie ; - étape (d) du procédé selon l'invention telle que précédemment définie. Il est clair que, lors de la mise en oeuvre de l'étape (d) et ce en vue de détecter ou de quantifier au moins une protéine, au moins un anticorps ou au moins un de leurs fragments présents dans un liquide d'intérêt, la densité optique réelle telle que précédemment définie est obtenue en soustrayant, à la densité optique obtenue à l'étape (d), la densité optique obtenue après la mise en oeuvre du procédé selon l'invention sur le support solide présentant à sa surface au moins un antigène ou au moins un anticorps spécifique de la protéine, de l'anticorps ou de leurs fragments recherchés. La présente invention concerne également la solution T1 telle que précédemment définie contenant un agent de coloration tel que précédemment défini en une quantité supérieure ou égale à 0,05 % en masse par rapport au volume de la solution T1. La présente invention concerne également la solution T2 telle que précédemment définie i.e. une solution comprenant un alcool et des ions carbonate. La présente invention concerne un kit d'éléments pour la mise en oeuvre du procédé selon l'invention contenant : - dans un premier compartiment, la solution T1 telle que précédemment définie ; - dans un second compartiment, la solution 20 T2 telle que précédemment définie ; - et, éventuellement, une (ou plusieurs) solution(s) de lavage telle(s) que précédemment définie(s). La presente invention concerne enfin 25 l'utilisation de la solution T1 telle que précédemment définie, de la solution T2 telle que précédemment définie, de la forme de bleu de Coomassie � violet-rose pâle � présentant une absorption maximale à 520 nm et/ou de la forme de bleu de Coomassie � bleu 30 turquoise � présentant une absorption maximale à 610 nm pour détecter et éventuellement quantifier, de façon indirecte, au moins une molécule comprenant au moins une fonction amine immobilisée à la surface d'un support solide. D'autres caractéristiques et avantages de la présente invention apparaîtront encore à la lecture des exemples ci-après donnés à titre illustratif et non limitatif. BRÈVE DESCRIPTION DES DESSINS La Figure 1 est une schématisation des étapes principales du procédé selon l'invention. La Figure 2 présente la détermination du domaine de linéarité du Bleu de Coomassie dans la solution T2/HC1 (Figure 2A) et le test aux résidus réduits (Figure 2B). EXPOSÉ DÉTAILLÉ DE MODES DE RÉALISATION PARTICULIERS EXEMPLE 1 : SUPPORTS, INTERFACES, STRATEGIES D'IMMOBILISATION ET PROCEDE DE L'INVENTION 1/ Format des supports Les études ont été effectuées sur (1) des microplaques formats de type ELISA, de 96 puits d'un volume inférieur à 400 pL, disponibles commercialement et fonctionnalisées en surface par : - CovalinkTM, Nunc, présentant des amines secondaires notées NHR ; - Amine'M, Corning, présentant des amines primaires notées NH2, ou sur (2) des supports Immobilizer NH2TM 30 vendus par la Société Nunc et présentant des 25 groupements époxy favorables à une immobilisation de surfaces aminées. 2/ Nature de l'interface Le choix principal s'est porté sur un dendrimère greffé de la lysine (DGL) décrit dans la demande internationale WO 2006/114528. Ce dendrimère est synthétisé à partir d'un peptide linéaire de 8 résidus lysine appelé génération 1 (G1) constituant le coeur du DGL. La génération 2 (G2) est obtenue à partir de G1 par le principe de synthèse divergente et est constituée de 48 résidus lysine, puis G3 à partir de G2 composée alors de 123 lysines, etc... Les générations de 1 à 5 ont été utilisées en tant qu'interfaces porteuses de fonctions aminées. Des protéines synthétiques de type lysozyme, polylysine linéaire (PLL) et sérum albumine bovine (BSA), des structures dendrimériques de type PAMAM ont également été immobilisées pour générer des supports coatés. Des supports disponibles commercialement (CovalinkTM, Nunc) et (AmineTM, Corning) possédant des amines de surface ont également été testés. 3/ Stratégies d'immobilisation Deux stratégies de greffage d'interface dendrimérique (DGL) sur le support ont été testées et comparées grâce à la présente invention. La première stratégie de greffage consiste à préactiver un support présentant des groupements amines en surface par un lien homobifonctionnel (ici le glutaraldéhyde). Ce lien interagit ensuite de façon covalente avec le DGL. Ce protocole est couramment utilisé au laboratoire et validé par des méthodologies analytiques pour la fixation de l'histamine [Claeys- Bruno, 2006]. La seconde stratégie de greffage fait intervenir un support couvert de groupements époxy (ImmobilizerTM, Nunc) en surface permettant une immobilisation directe des protéines via leurs résidus lysines et/ou l'amine en position N-terminale des protéines. Après greffage des dérivés protéiques et/ou des dendrimères, des étapes de lavage ont été mises en oeuvre pour éliminer au maximum les agrégats protéiques et/ou les adsorptions non spécifiques de protéines sur le support. Les lavages dans un bain de tampon carbonate (pH 11, 0,1 M) contenant 50% MeOH conduisent à des résultats reproductibles après le greffage d'une interface de type dendrimérique. En effet, les concentrations en bleu dans le tampon T2 obtenues après plusieurs lavages et cycles de coloration/décoloration ne sont pas significativement différentes au seuil des 5% (Test de Student) (voir Exemples 2 et 4). La présente invention a permis de contrôler les étapes de lavage et ainsi de minimiser les variabilités inter et intra expériences. 4/ Procédé selon l'invention. La stratégie de coloration/décoloration du 30 procédé objet de la présente invention a été appliquée aux supports coatés réalisés par les deux stratégies de greffage décrites ci-dessus. Tout d'abord, les microplaques ont subi plusieurs bains de lavage afin d'éliminer au maximum les agrégats de DGL et les interactions non spécifiques susceptibles de se former lors des étapes de greffage. Etape (a) du procédé selon l'invention une solution T1 composée à 85 % H20 milliQ, 10 % de MeOH de qualité analytique et 5 % d'acide acétique de qualité analytique et dont le pH est de 2,2 a été préparée. Le bleu de Coomassie (G-250) est utilisé à 0,05% en masse dans cette solution, soit 500 pg de bleu de Coomassie par mL de solution T. 250 pL de solution T1 avec bleu de Coomassie ont été introduits dans les puits des microlaques puis laissés en contact pendant un temps compris entre 5 et 30 min, sous agitation, à température ambiante. Etape (b) du procédé selon l'invention les puits ont été vidés puis lavés avec la solution T1 sans bleu de Coomassie pendant 10 min, sous agitation et ce, deux fois. Etape (c) du procédé selon l'invention sont introduits par puits 250 pL de la solution T2 composée de 50 % d'une solution carbonate (0,1 M, pH 11,5) et de 50 % de MeOH de qualité analytique. La solution est laissée en contact dans le puits pendant un temps inférieur à 5 min, sous agitation, à température ambiante, avant d'être récupérée. Aux 250 pL de solution T2 récupérés, sont ajoutés 20 pL de HC1 (3 N), le pH de la solution est alors de 6,1. Etape (d) du procédé selon l'invention : L'absorbance des solutions récupérées acidifiées est alors mesurée à 610 nm. Dans les exemples qui suivent les absorbances réelles sont considérées. Les absorbances réelles sont le résultat de la différence des absorbances lues avec celles des bruits de fond obtenues dans les mêmes conditions (par exemple même solution tampon mais sans bleu de Coomassie...). Les exemples qui suivent sont, plus particulièrement, des exemples d'application du procédé objet de la présente invention. EXEMPLE 2 : ETUDE DE L'EFFET DES SOLUTIONS UTILISEES LORS DE L'IMMOBILISATION DES FONCTIONS 15 AMINEES Cette étude concerne l'immobilisation directe de l'interface dendrimérique DGL de génération G3 sur un support fonctionnalisé en surface par des groupements époxy. Différentes solutions ont été 20 testées lors du couplage. Les résultats du tableau 1 ci-après sont une moyenne de six expériences réalisées dans les mêmes conditions avec 200 pg de DGL introduit par puits (volume de 100 pL). Tableau 1 Concentration Solution de couplage en bleu (pg/mL) dans T2 Tampon acétate pH 8, 3M 0,013 � 0,034 Tampon Carbonate pH 9, 0,1M 0,075 � 0,005 Tampon Carbonate pH 11, 0,25 M 0,053 � 0,014 Tampon Carbonate pH 11, 0,25 0,036 � 0,017 M/50% MeOH 25 Le tampon Carbonate à pH 9 est donc le tampon de choix pour immobiliser les DGL. Nous avons vu par la suite que le taux de couplage dépend de la concentration et qu'une concentration inférieure ou égale à 50 pg par puits de DGL(G3) conduisait à des quantités de bleu dans T2 beaucoup plus importantes, donc à de meilleures fixations de l'interface. EXEMPLE 3 : STABILITE DU SUPPORT SOLIDE 10 COATE L'immobilisation directe de l'interface dendrimérique DGL (G3) à 10, 20, et 50 pg par puits (250 pL en volume) a été réalisée sur un support fonctionnalisé en surface par des groupements époxy. 15 Les résultats du tableau 2 ci-après sont une moyenne de six expériences après le procédé de coloration/décoloration de la présente invention. Chaque puits a subi des lavages dans diverses solutions pour tester la stabilité du support coaté. 20 38 Tableau 2 Quantité Lavages par puits Bain de PBS 24 h sous Bain de tampon introduite carbonate (pHll)/505 par puits McOH lors de l'étape de greffage (300 gL de PBS) (x 3) agitation sous agitation 24 h Concentration Nombre de Concentration Nombre de Concentration Nombre de en bleu molécules en bleu molécules en bleu molécules de bleu de bleu de bleu 9 (x Io') ,4 (x l0 ) par puits (x 10- ) par puits par puits (pg/mL) dans (pg/mL) dans (pg/mL) dans T2 T2 T2 1,63 � 0,06 3,09 � 1,24 � 0,07 2,43 � 1,29 � 0,07 2,52 � 0,11 0,17 0,12 20 1,74 � 0,10 3,32 + 1,34 � 0,08 2,7() + 1,47 � 0,05 2 RO + 0,18 0,25 ' 0,12 50 1,95 � 0,04 3,71 � 1,49 � 0,01 3,20 � 1,85 � 0,17 3,52 � 0,08 0,66 0,45 Ces résultats démontrent qu'après un bain dans le tampon mixte carbonate/MeOH les surfaces obtenues sont stables. La quantité de bleu de Coomassie détectée dans T2 n'est pas significativement différente au seuil des 5% (Test de Student). Des cycles de coloration/décoloration selon le procédé de la présente invention ont pu également être réalisés sur ces mêmes supports coatés : ils n'affectent en rien les valeurs de bleu obtenues dans T2. EXEMPLE 4: UTILISATION DE DIFFERENTES MOLECULES PRESENTANT DES FONCTIONS AMINEES L'immobilisation directe de l'interface dendrimérique DGL (de génération G1, G2, G3, G4, G5), de la polylysine linéaire (PLL), du lysozyme et de la sérum albumine bovine (BSA), et du PAMAM de génération 5 a été réalisée sur un support fonctionnalisé en surface par des groupements époxy. Les résultats du tableau 3 ci-après sont une moyenne de six expériences réalisées dans du tampon carbonate pH 9.6 avec 20 pg de protéines introduites par puits (100 pL en volume). Chaque puits a subi un lavage de 300 pL de solution de PBS (3 x 10 min) avant l'étape de coloration. Tableau 3 Masse Moléculaire Nombre d'amines (g/mol) (x 1014) par cm2 Sans DGL / / DGL de génération 1 1 400 0,96 � 0,08 DGL de génération 2 8 350 1,36 � 0,12 DGL de génération 3 21 500 2,30 � 0,12 DGL de génération 4 64 000 4,20 � 0,18 DGL de génération 5 169 000 3,43 � 0, 19 Polylysine linéaire 15 000 à 30 000 1,65 � 0,14 PAMAM 28 825 2,16 � 0,19 (G5) Ces résultats montrent, d'une part, qu'il y a eu fixation de toutes les interfaces et, d'autre part, que la surface recouverte de l'interface dendrimérique G4 présente une densité de surface beaucoup plus importante que les autres interfaces citées ci-dessus. Les résultats obtenus sur le DGL de génération 3 (masse moléculaire 21 500 g/mol, 123 amines de surface) est en accord avec ceux obtenus sur le PAMAM de génération 5 (masse moléculaire 28 825 g/mol, 128 amines de surface). EXEMPLE 5: REPRODUCTIBILITE DES GREFFAGES INDIRECTS UTILISANT DU GLUTARALDEHYDE L'immobilisation de l'interface dendrimérique DGL (génération G3) a été réalisée via un lien homobifonctionnel (le glutaraldéhyde) sur un support fonctionnalisé en surface par des amines (NHR, CovalinkTM). Le protocole est couramment utilisé au laboratoire pour la fixation de l'histamine [Claeys- Bruno, 2006]. Le volume de solution est de 200 pL/puits. Les résultats obtenus sont présentés dans le tableau 4 ci-après. Tableau 4 Concentration Concentration introduite en bleu (pg/mL) Sans DGL � support commercial NHR� 0,16 � 0,01 100 pg/puits 5,0 � 0,3 200 pg/puits 6,0 � 1,0 400 pg/puits 5,1 � 0,7 1000 pg/puits 5,3 � 0,825 Ce travail a permis, dans un premier temps, de mettre au point les conditions optimales de lavage pour éliminer au maximum les agrégats possibles de DGL et les adsorptions non spécifiques sur le support. Les valeurs présentées dans le tableau 4 sont obtenues après 3 bains de lavage en tampon carbonate/50%MeOH. De même, après 6 cycles de coloration/décoloration sur ces supports coatés, la valeur du bleu de Coomassie dans T2 ne varie pas par puits, les valeurs de bleu étant identiques au seuil des 95% pour un même puits après des cycles de coloration/décoloration. Dans un second temps, grâce à la présente invention, il a été démontré qu'une concentration inférieure à 100 pg de DGL (G3) suffit à la formation d'un support coaté dans le cas de la stratégie utilisant le glutaraldéhyde comme agent bifonctionnel. Or, la présente stratégie a également permis de mettre en évidence qu'il existe une grande variabilité sur les valeurs obtenues sur des greffages réalisés sur deux journées différentes et parfois même d'un puits à l'autre avec cette stratégie de greffage utilisant le glutaraldéhyde comme agent bifonctionnel. Il a donc pu être vérifié dans ce cas particulier qu'une stratégie d'immobilisation utilisant le lien glutaraldéhyde ne conduit pas à une homogénéité de greffage. Les supports ainsi coatés ne répondent donc pas au critère de reproductibilité. Quelle que soit la concentration en DGL introduite, les supports coatés conduisent à des concentrations en bleu de Coomassie plus de 30 fois supérieures à celles du support commercial. En outre, des greffages de DGL par adsorptions sur le support montrent qu'après des lavages dans des bains de tampon carbonate/MeOH, les valeurs de bleu obtenues dans T2 ne sont pas significativement différentes de celles obtenues sur le support NHR. Ceci suggère que : 1/ il y a bien élimination des adsorptions non spécifiques 2/ que les valeurs lues sont corrélées uniquement aux DGL greffés de façon covalente au support 3/ la stratégie d'immobilisation de l'interface DGL via le glutaraldéhyde permet néanmoins d'obtenir des densités d'amines de surface beaucoup plus importantes que la précédente stratégie et par rapport au support commercial puisqu'il y a environ 8 x 1014 molécules de bleu par puits après l'étape de décoloration (gain en sensibilité). EXEMPLE 6: COMPARAISON DE L'ETAPE DE COLORATION DE LA PRESENTE INVENTION AVEC UNE ETAPE DE COLORATION REALISEE AVEC LE REACTIF DE BRADFORD Pour comparer les deux étapes de coloration, a été appliquée, dans un premier temps, la stratégie colorimétrique développée, aux deux types de supports coatés et stables, avec T1 comme tampon de coloration suivie d'une décoloration avec T2. Dans un second temps et avec les mêmes supports, l'étape de coloration avec T1 a été remplacée par une étape de coloration utilisant le réactif de Bradford, l'étape de décoloration avec T2 restant inchangée. Les résultats sont présentés dans le tableau 5 ci-après. Tableau 5 Concentration en bleu (pg/mL) Coloration avec T1 DGL (G3) immobilisé sur support NHR 6,0 � 1,0 via le glutaraldéhyde (200 pg/puits) DGL (G3) immobilisé directement sur 1,29 � 0,07 plaque époxy (10 pg/puits) Coloration avec le réactif de Bradford DGL (G3) immobilisé sur support NHR via le glutaraldéhyde DGL (G3) immobilisé directement sur plaque époxy Les quantités de bleu déterminées dans T2 avec le réactif de Bradford sont très inférieures à celles trouvées avec la solution T. En outre, dans le cas d'une stratégie de greffage directe, la valeur obtenue est inférieure à la limite de quantification. La quantité de bleu dans t2 pour le DGL (G3) immobilisé sur support NHR via le glutaraldéhyde lors de la coloration avec le réactif de Bradford est 2,3 fois inférieure à celle déterminée lors d'une coloration avec T. 2,6 � 0, 5 Atherton, B. A., E.L. Cunningham and A.G. Splittgerber (1996). "A mathematical model for the description of the coomassie brilliant blue protein assay." Analytical Biochemistry 233: 160-168. Bradford, M. M. (1976). "A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding." Analytical Biochemistry 72: 248- 254. Chiai, H. J., H. B. Thompson, et al. (1993). "A spectral study of the charge forms of Coomassie blue G." Analytical Biochemistry 209(2): 258- 266. Chiai, H. J. and A. G. Splittgerber (1993). "A comparison of the binding of Coomassie brilliant blue to proteins at low and neutral pH." Analytical Biochemistry 213(2): 362-369. Congdon, R. W., G. W. Muth, et al. (1993). "The binding interaction of Coomassie blue with proteins." Analytical Biochemistry 213(2): 407-413. Claeys-Bruno, M., O. Vandenabeele- Trambouze, et al. (2006). "Methodological approaches for histamine quantification using derivatization by chloroethylnitrosourea and ELISA measurement. Part I. Optimization of derivated histamine detection with coated-plates using optimal design and Part II: Optimisation of the derivatization step." Chemometrics and Intelligent Laboratory Systems 80(2): 176-197. 5 Brevet US 6,696,304 (Luminex corporation) publié le 24 février 2004. Brevet US 6,555,382 (Wondrak E.M.) publié le 29 novembre 2001. Demande internationale WO 2006/114528 (CNRS & UNIVERSITE MONTPELLIER II) publiée le 2 novembre 2006. REVENDICATIONS 1) Procédé de détection et éventuellement de quantification d'au moins une molécule comprenant au moins une fonction amine immobilisée à la surface d'un support solide, ledit procédé comprend les étapes successives suivantes : a) mise en contact de ladite surface du support solide avec une solution T1 contenant un agent 10 de coloration, b) élimination dudit agent de coloration n'ayant pas réagi avec ladite surface lors de l'étape (a), c) mise en contact de ladite surface avec 15 une solution T2 apte à dissocier l'éventuel (ou les éventuels) complexe(s) formé(s) entre ledit agent de coloration et ladite molécule comprenant au moins une fonction amine, d) détection dudit agent de coloration 20 éventuellement présent dans la solution T2 de façon à détecter et éventuellement quantifier ladite molécule comprenant au moins une fonction amine. 2) Procédé selon la revendication 1, 25 caractérisé en ce que ledit agent de coloration est choisi dans les familles des anthraquinones, des mono et dichlorotriazines, des dérivés (di)azo et des triphénylméthanes. 30 3) Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que ledit agent de coloration estsélectionné parmi les agents fluorescents ou les agents phosphorescents. 4) Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisé en ce que ladite molécule comprenant au moins une fonction amine est choisie dans le groupe constitué par les peptides, les polypeptides, les protéines, les protéines présentant des groupes prosthétiques, les anticorps, les acides nucléiques transaminés, les amines biogènes, les dendrons et les dendrimères, leurs fragments et leurs dérivés. 5) Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisé en ce que ledit support solide ou du moins ladite surface dudit support solide où ladite molécule comprenant au moins une fonction amine est immobilisée, est un support solide ou une surface inorganique. 6) Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisé en ce que ledit support solide ou du moins ladite surface dudit support solide où ladite molécule comprenant au moins une fonction amine est immobilisée est en un matériau organique. 7) Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce que ledit support solide présente une surface portant des groupements fonctionnels grâce auxquels ladite moléculecomprenant au moins une fonction amine est capable de s'immobiliser. 8) Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce que ladite molécule comprenant au moins une fonction amine est immobilisée de façon indirecte à la surface du support solide. 9) Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce que ladite solution T1 est une solution aqueuse comprenant un alcool et/ou un acide, le pH de ladite solution T1 étant, de préférence, supérieur à 1. 10) Procédé selon la revendication 9, caractérisé en ce que ledit alcool est choisi dans le groupe constitué par le méthanol, l'éthanol, le propanol, l'isopropanol, le butanol et leurs mélanges, la proportion d'alcool étant, de préférence, comprise entre 1 et 25 % en volume par rapport au volume total de solution T1. 11) Procédé selon l'une quelconque des revendications 9 ou 10, caractérisé en ce que ledit acide est choisi dans le groupe constitué par l'acide acétique, l'acide trichloroacétique et leurs mélanges, la proportion d'acide étant, de préférence, comprise entre 0,5 et 20 en volume par rapport au volume total de solution T1. 12) Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce que ledit agent de coloration est utilisé en une quantité comprise entre 0,001 et 1 % en masse par rapport au volume total de solution T1. 13) Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce que ladite étape (b) comprend un (ou plusieurs) lavage(s) de la surface du support solide aux moyens de solutions de lavage identiques ou différentes_ 14) Procédé selon la revendication 13, caractérisé en ce que lesdites solutions de lavage sont choisies dans le groupe constitué par l'eau, l'eau distillée, l'eau déminéralisée, l'eau désionisée, un tampon phosphate salin, une solution saline, un tampon acétate, un tampon carbonate, une solution aqueuse comprenant un alcool et/ou un acide telle que définie aux revendications 8 à 10 et leurs mélanges. 15) Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce que ladite solution T2 est une solution aqueuse contenant un solvant organique et un élément choisi parmi la soude, la potasse, des ions carbonates et leurs mélanges, le pH de la solution T2 étant, de préférence, supérieur à 9. 16) Procédé selon la revendication 15, caractérisé en ce que ledit solvant organique est un alcool. 17) Procédé selon la revendication 16, caractérisé en ce que ledit alcool est choisi dans le groupe constitué par le méthanol, l'éthanol, le propanol, l'isopropanol, le butanol et leurs mélanges, la proportion d'alcool étant, de préférence, comprise entre 10 et 80 % en volume par rapport au volume total de solution T2. 18) Procédé selon l'une quelconque des revendications 15 à 17, caractérisé en ce que lesdits ions carbonate présentent une molarité comprise entre 0,001 et 1 M. 19) Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce que ladite détection de l'agent de coloration lors de l'étape (d) consiste à mesurer la densité optique de la solution T2 obtenue après l'étape (c). 20) Utilisation d'un procédé tel que défini dans l'une quelconque des revendications 1 à 19 pour comparer différentes stratégies d'immobilisation de molécules comprenant au moins une fonction amine sur des supports solides et susceptibles de générer des supports coatés, des puces à peptides, des puces à protéines, des puces à anticorps ou des puces à cellules. 21) Utilisation d'un procédé tel que défini dans l'une quelconque des revendications 1 à 19 pour vérifier si les supports coatés, les puces à peptides, les puces à protéines, les puces à anticorps ou les puces à cellules répondent à tous les critères de qualité analytique. 22) Utilisation d'un procédé tel que défini dans l'une quelconque des revendications 1 à 19 pour détecter et éventuellement quantifier au moins une protéine, au moins un anticorps ou au moins un de leurs fragments présents dans un liquide d'intérêt. 23) Solution T1 telle que définie dans l'une quelconque des revendications 9 à 11 contenant un agent de coloration tel que défini dans l'une quelconque des revendications 2 ou 3 en une quantité supérieure ou égale à 0,05 % en masse par rapport au volume de la solution T1. 24) Solution T2 telle que définie dans l'une quelconque des revendications 15 à 17. 25) Kit d'éléments pour la mise en œuvre d'un procédé selon l'invention contenant : - dans un premier compartiment, la solution T1 telle que définie dans l'une quelconque des revendications 9 à 11 contenant un agent de coloration tel que défini dans l'une quelconque des revendications2 ou 3 en une quantité supérieure ou égale à 0,05 % en masse par rapport au volume de la solution T1 ; - dans un second compartiment, la solution T2 telle que définie dans l'une quelconque des revendications 15 à 17 ; - et, éventuellement, une (ou plusieurs) solution(s) de lavage telle(s) que définie(s) à la revendication 14. 26) Utilisation - de la solution T1 telle que définie dans l'une quelconque des revendications 9 à 11 contenant un agent de coloration tel que défini dans l'une quelconque des revendications 2 ou 3 en une quantité supérieure ou égale à 0,05 % en masse par rapport au volume de la solution T1, - de la solution T2 telle que définie dans l'une quelconque des revendications 15 à 17, - de la forme de bleu de Coomassie 20 � violet-rose � présentant une absorption maximale à 520 nm - et/ou de la forme de bleu de Coomassie � bleu turquoise � présentant une absorption maximale à 610 nm 25 pour détecter et éventuellement quantifier, de façon indirecte, au moins une molécule comprenant au moins une fonction amine immobilisée à la surface d'un support solide.