Brevet FR2932179A1 — publié le 20091211

L'invention a pour objet un procédé (le production microbiologique de dérivés de cinnamoyl amides d'acides aminés, certains produits en résultant et leurs utilisations, notamment comme antioxydants. Des molécules de cette famille ont été essentiellement isolées du règne végétal, principalement dans l'organe reproducteur de plantes, alors qu'elles semblent être absentes des parties vertes de celles-ci (Martin-Tanguy et al., Phytochemistry, 17: 1927-1928, 1978 ; FEBS Lett., 108: 176-178, 1979). En 2003, Alemano et al. (Annals of Botany, 92: 613-623) ont identifié la N-caffeoyl-tyrosine et la N-cafféoyl-DOPA dans des cellules d'embryogénèse somatique de Theobroma cacao. Plus tard, dans les grains de café vert (robusta), la p-coumaroyl-N-tyrosine, la féruloyl-N-tyrosine, la féruloyl-N-tryptophane et la cafféoyl-N-phénylalanine ont été mises en évidence (Clifford and Knight, Food chemistry, 87: 457-453, 2003), alors que leur pourvoir antioxydant avait déjà été constaté auparavant (Sanbongi et al., J. Agric. Food Chem. 46: 454-457, 1998). Puis, Stark et Hoffman (J. Agric. Food Chem., 53: 5419-5428, 2005) puis Stark et al. (J. Agric. Food Chem., 54: 2859-2867, 2006) ont ensuite identifié et complété la liste par d'autres analogues présents dans les mêmes sources végétales. Les amides d'acides cinnamique et hydroxycinnamique ont été surtout répertoriés et évalués pour leurs activités antioxydanl.es importantes (Spasova et al., J. Peptide Sci., 12: 369-375, 2006), propriété qui semble inhérente à toute structure de ce type. D'autres molécules comme le 4-hydroxycinnamoyl-(L-phénylalanine méthyl ester) amide ou encore le 3,4-dihyclroxycinnamoyl-(L-aspartic acid dibenzyl ester) amide ont été cités pour leur activité antioxydante contre l'oxydation des LDL (lowdensity lipoproteins) par le cuivre, et ces molécules inhibent en même temps l'activité de l'acyl-CoA:cholesterol acyltransférase humaine (Lee ei` al., Biorg. Med.Chem. Letters, 14: 4677-4681, 2004) ; elles sont donc impliquées dans l'hypercholestérolémie. Les N-cinnamoyl amides ont également été décrits comme étant des agents anti-agrégants plaquettaires (Hung et al., Bioorganic and Medicinal Chemistry, 13: 1791-1797, 2005). Les clovamides (N-cinnamoyl tyrosine) qui sont des phytoalexines s'accumulant dans les plantes suite à l'attaque de pathogènes (Yamamoto et al., Pharmacol Biochem Behav, 40: 465-469 , 1991) en font également partie, et sont à ce titre connus pour être des antimicrobiens puissants. Enfin des activités vaso-relaxantes de dérivés N-cafféoylamino R acides (R = GABA ou acide hexanoique) ont aussi été décrits récemment (Iizuka et al., Yakugaku 35 Zasshi, 123: 963-971, 2003). Les dérivés cinnamoyl amide d'acides aminés constituent donc une famille de molécules au potentiel important aussi bien clans le domaine thérapeutique qu'en cosmétique, ou encore comme agent conservateur. Toutefois, leur isolement à partir de plantes est difficile, les rendements et les quantités sont faibles, et les structures peu diversifiées. Des méthodes pour la synthèse de certaines de ces molécules par voie chimique ont été décrites ; mais elles requièrent plusieurs étapes, utilisent des composés toxiques et sont par conséquent difficiles à industrialiser : Dans la synthèse décrite par Iizuka et al. (Yakugaku Zasshi, 123: 963-971, 2003), quatre étapes sont nécessaires : (1) protection des fonctions hydroxyles du cycle par le chloro-acétate d'éthyle en milieu basique, (2) puis couplage par le dicyclohexylcarbodiimide (DCCDI); (3) l'acide aminé est ensuite couplé en présence de triéthylamine, et enfin (4) une hydrolyse libère les fonctions hydroxyle du noyau aromatique (dé-protection). Par cette méthode ont été synthétisées la N-cafféoylglycine, la N-cinnamoylglycine, la N-cafféoyl-(3-alanine, la N-cinnamoyl-13-alanine. Une autre synthèse plus rapide basée sur la fixation de l'acide aminé (acide L-aspartique ou L-tryptophane dans ce cas) sur le chlorure d'acyle correspondant après protection préalable des groupes hydroxyles du cycle aromatique par la diméthylaminopyridine (DMAP). La réaction d'amidation s'effectue par reflux en présence de tétrahydrofurane (THF), suivi enfin d'une dé-protection pour libérer les hydroxyles (Stark et Hofmann, J. Agric. Food Chem., 53: 5419-5428, 2005; Stark et al, J. Agric. Food Chem., 54: 2859-2867, 2006). Citons également les travaux de Tada et al. (J. Oleo Sci., 51: 19-27, 2002) qui décrivent la synthèse de différents dérivés dont l'ester méthylique de la N-cafféoyl-O-acétylsérine qui a une forte activité antioxydante et inhibitrice de la tyrosinase. Par ailleurs, Lee et al. (Bioorg. Med. Chem. Lett., 14: 4677-4681, 2004) ont effectué la synthèse d'esters de p-coumaroyl amide de l'acide aspartique (ester méthylique) et de la phénylalanine (ester dibenzylique) respectivement, par une méthode équivalente à Iizuka et al. (Yakugaku Zasshi, 123: 963-971, 2003) (voir plus haut). Il subsistait donc le besoin d'une méthode simple, facile à mettre en oeuvre, industrialisable, et permettant la préparation de dérivés cinnamoyl amide d'acides aminés. L'invention a pour premier objet un procédé de préparation de molécules répondant à la formule (I) suivante : (I) dans laquelle : A représente un groupement choisi parmi ûCH=CHû et -CH2ûCH2-, xi est un entier choisi parmi 0 et 1, X2 est un entier choisi parmi 0 et 1, R1, R2, indépendamment l'un de l'autre, représentent un groupement choisi parmi : H, les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle, les groupements ûCO-R4, R4 représentant un groupement choisi parmi : les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle, R3 représente un groupement choisi parmi : H, les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle, une chaîne peptidique d'acides aminés comprenant de 1 à 30 acides aminés, * représente la configuration optique L ou D de l'acide aminé ûNHCHRûCOOû, * peut représenter l'une ou l'autre des configurations suivant le choix de R, R représente une chaîne latérale d'acide aminé choisie parmi : ûH (glycine), ûCH3 (L-alanine, D-alanine), ûCH2OH (L-sérine), ûCHOHûCH3 (L-thréonine), ûCH2OR5 (L-sérine protégée sur sa fonction hydroxyle), ûCHOR5ûCH3 (L-thréonine protégée sur sa fonction hydroxyle), R5 représentant un groupement choisi parmi : H, les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle, les groupements ûCOûR6, R6 représentant un groupement choisi parmi : les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle. Par alkyle en C1-C6 on entend un groupement alkyle, linéaire ramifié ou cyclique, comprenant de 1 à 6 atomes de carbone, comme par exemple un groupement méthyle, éthyle, n-propyle, isopropyle, n-butyle, t-butyle, isobutyle, n-pentyle, n-hexyle. Selon l'invention, les molécules de formule (I) sont préparées par un procédé qui comporte au moins une étape de culture d'au moins une bactérie choisie parmi les Bacillaceae, en présence d'au moins deux substrats sélectionnés parmi ceux de formules (II) et (III) ci-dessous : OH H2N'000R3 (II) (III) dans lesquelles A, xi, x2, R3,* et R ont la même définition que dans la formule (I), R', R2, indépendammeni l'un de l'autre représentent un groupement choisi parmi : les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle, les groupements -CO-R4, R4 représentant un groupement choisi parmi : les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle. Par alkyle en C1-C6 on entend un groupement alkyle, linéaire ramifié ou cyclique, comprenant de 1 à 6 atomes de carbone, comme par exemple un groupement méthyle, éthyle, n-propyle, isopropyle, n-butyle, t-butyle, isobutyle, n-pentyle, n-hexyle. Avantageusement, le procédé de l'invention comporte une étape de culture d'au moins une bactérie choisie parmi celles appartenant au genre Bacillus, encore plus avantageusement une bactérie choisie parmi : Bacillus subtilis, Bacillus licheniformis, Bacillus thermoamylovorans, Bacillus (ou Geobacillus) stearothermophilus, Bacillus caldotenax. Et préférentiellement, la bactérie est choisie parmi : • Bacillus subtilis subsp. Spizizenii : DSM 15029 (température de croissance = 30°C) • Bacillus licheniforrnis : DSM 13, ATCC 14580, NCIB 9375 (température de croissance = 30°C) • Bacillus thermoamylovorans (souche isolée par le laboratoire IRDMarseille): DSM 13307 (température de croissance = 50°C) • Bacillus (ou Geobacillus) stearothermophilus : DSM 22, ATCC 12980, NCIB 8923 (température de croissance = 55°C) • Bacillus caldotenax : DSM 406 (température de croissance = 70°C) De façon surprenante, l'Inventeur a constaté que la culture d'une bactérie décrite ci-dessus en présence d'au moins un de chacun des substrats (II) et (III) donnait lieu à la formation d'une liaison amide ern:re la fonction acide du substrat (II) et la fonction amine du substrat (III) pour donner accès au produit de formule (I) correspondant. Le procédé de l'invention permet ainsi d'accéder à une famille de produits variés mais 25 présentant néanmoins des caractéristiques structurales très spécifiques liées à la spécificité de la bactérie pour les substrats (II) et (III). De façon préférentielle, dans la formule (I), l'une ou plusieurs des conditions ci-dessous sont satisfaites : A représente un groupement ûCH=CH--, R', R2, indépendamment l'un de l'autre représentent un groupement choisi parmi : H, ûCH3, R3 représente H, R représente une chaîne latérale d'acide aminé choisie parmi : ûH 10 (glycine), ûCH3 (L-alanine, D-alanine), ûCH2OH (L-sérine), ûCHOHûCH3 (L-thréonine), En fonction de la façon dont on va utiliser le composé (I) ultérieurement, on choisit des précurseurs (II) et (III) appropriés : Si le composé de formule (I) doit subir des étapes de synthèse ultérieures, il peut être souhaitable de le préparer sous une forme protégée, en choisissant les groupes 15 protecteurs R1, R2, R3 et éventuellement R5 appropriés. Notamment, lorsque x1=1 ou x2=1, alors, pour la mise en oeuvre de l'étape de culture, on choisit R1≠H, respectivement R2: H. En effet, la transformation en produit (I) est plus efficace lorsque le cycle aromatique du dérivé cinnamoyl (II) ne comporte pas de substituant ou que ceux-ci sont protégés. Ensuite, il est possible de libérer 20 les fonctions hydroxyle présentes sur le cycle cinnamoyl par un traitement enzymatique avec une peroxydase (Paice et al., Applied Environmental Microbiology, 1993, 59:260-265). Un composé de formule (I) comportant une chaîne peptidique R3 peut être obtenu directement par le choix d'un substrat correspondant (III) dans lequel la chaîne 25 peptidique R3 est déjà présente, ou à partir d'un composé de formule (I) avec R3 = H par une étape ultérieure de greffage sur une chaîne peptidique ou de façon séquentielle par allongement de la chaîne d'acide aminé (Bodansky, Synthesis, 453-463, 1972). Les composés de formule (I) avec A =_ ûCH2ûCH2û peuvent être obtenus directement à partir du précurseur (II) correspondant ou à partir d'un précurseur (II) dans 30 lequel A représente ûCH=CHû et en opérant, par des moyens bien connus de l'homme du métier, par une réduction chimique ou microbiologique de la double liaison (J March, Advanced Organic Chemistry, 1985, Wiley and sons, 691-700). Lorsque l'on souhaite obtenir un seul composé de formule (I), on le prépare à partir des deux précurseurs correspondants (II) et (III). Il est possible de préparer 35 un mélange de molécules de formule (I) par culture d'une bactérie décrite ci-dessus en présence d'un mélange de substrats (II) et/ou d'un mélange de substrats (III). La culture de la bactérie est faite dans un milieu qui, outre les composés (II) et (III), comporte avantageusement des sels minéraux et un extrait de levure. De préférence, il comporte les sels minéraux suivants : KH2PO4, K2HPO4, NaCl, NH4C1. Avantageusement, le milieu de culture ne comporte pas d'autres acides aminés que ceux de formule (III), ce qui réduit les étapes de purification en fin de procédé. Selon une autre variante préférée de l'invention, le milieu de culture comporte encore, outre le ou les acides aminés de formule (III), au moins un autre acide aminé choisi parmi : la lysine, la proline, la cystéine. Avantageusement, ces acides aminés sont sous forme (L). Ainsi que l'inventeur l'a constaté, ces acides aminés ne sont pas utilisés par la bactérie pour participer directement à la formation d'un produit de formule (I), mais ils contribuent à améliorer le rendement de synthèse des composés de formule (I) à partir d'acides aminés de formule (III) tels que définis ci-dessus présents dans le milieu. Avantageusement, la concentration d'un ou plusieurs de ces acides aminés dans le milieu de culture est comprise entre 1 et 4 mM. Selon le procédé de l'invention, la concentration du composé de formule (II) dans le milieu de culture est préférentiellement comprise entre 0,5 et 10 mM, et 15 avantageusement entre 1 et 5 mM. Selon le procédé de l'invention, la concentration du composé de formule (III) dans le milieu de culture est préférentiellement comprise entre 0,5 et 20 mM, et avantageusement entre 2 et 8 mM. Selon le procédé de l'invention, la proportion des composés de formule 20 (II) et (III) en mole est : 0,30 �11)/011) Parmi les molécules de formule (I) obtenues par le procédé de l'invention, certaines sont nouvelles et constituent à ce titre un autre objet de l'invention. Notamment, l'invention a pour objet les composés répondant à la formule (Ia) ci-dessous : R5O\,CH3 (la) dans laquelle : A représente un groupement choisi parmi ùCH=CHù et ùCH2ùCH2ù, xi est un entier choisi parmi 0 et 1, X2 est un entier choisi parmi 0 et 1, R', R2, indépendamment l'un de l'autre représentent un groupement choisi parmi : H, les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle, les groupements ùCOùR4 et R4 représente un groupement choisi parmi : les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle, R3 représente un groupement choisi parmi : H, les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle, une chaîne peptidique d'acides aminés comprenant de 1 à 30 acides aminés, * représente la configuration optique L, R5 représente un groupement choisi parmi : H, les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle, les groupements ùCOùR6 et R6 représente un groupement choisi parmi : les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle. De façon avantageuse, dans la formule (Ia), une ou plusieurs des conditions suivantes sont satisfaites : A représente ùCH=CHù, x1 est un entier choisi parmi 0 et 1, x2 est un entier choisi parmi 0 et 1, R1, R2, indépendamment l'un de l'autre représentent un groupement choisi parmi : H, -CH3, R3 représente H, * représente la configuration optique L, R5 représente H. De façon préférée, le composé de formule (Ia) est choisi parmi la liste suivante : 8 - N-cinnamoyl-L-thréonine, - N-(4-méthoxycinnamoyl)-L-thréonine, - N-(3,4-diméthoxycinnamoyl)-L-thréonine, - N-coumaroyl-L-thréonine, 5 - N-cafféoyl-L-thréonine. L'invention a encore pour objet les composés répondant à la formule (Ib) ci-dessous : R50 10 (lb) dans laquelle : A représente un groupement choisi parmi ùCH=CHù et ùCH2ùCH2ù, x1 est un entier choisi parmi 0 et 1, x2 est un entier choisi parmi 0 et 1, 15 R', R2, indépendamment l'un de l'autre représentent un groupement choisi parmi : H, les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle, les groupements ùCOùR4 et R4 représente un groupement choisi parmi : les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle, R3 représente un groupement choisi parmi : H, les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle, une chaîne peptidique d'acides aminés comprenant de 1 à 30 acides 20 aminés, * représente la configuration optique L, R5 représente un groupement choisi parmi : H, les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle, les groupements ùCOùR6 et R6 représente un groupement choisi parmi : les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle, 25 à l'exclusion des composés suivants : A représente ùCH=CHù, x1 = 1, x2 = 1, et -R'=R2=R3=H, R5= H, ou 10 15 20 25 - R'=R2=H, R3= CH3, R5 =H, ou - R' = R2 = H, R3 = CH3, R5 = CH3COù, ou - R' = R2 = CH3COù, R3 = CH3, R5 = CH3COù, ou - R'=R2=CH3COù,R3=1-1,R5= H, ou - R' = R2 = CH3COù, R3 = tBu, R5 = tBu. De façon avantageuse, dans la formule (Ib) une ou plusieurs des conditions suivantes sont satisfaites : A représente ùCH=CHù, xi est un entier choisi parmi 0 et 1, x2 est un entier choisi parmi 0 et 1, R', R2, indépendamment l'un de l'autre représentent un groupement choisi parmi : H, CH3, R3 représente H, * représente la configuration optique L, R5 représente H. De façon préférée, le composé de formule (Ib) est choisi parmi la liste suivante : - N-cinnamoyl-L-sérine, - N-(4-méthoxycinnamoyl)-L-sérine, - N-(3,4-diméthoxycinnamoyl)-L-sérine, - N-coumaroyl-L-sérine. L'invention a encore pour objet les composés répondant à la formule (Ic) ci-dessous : CH3 Oc) dans laquelle : A représente un groupement choisi parmi ùCH=CHù et ùCH2ùCH2ù, xi est un entier choisi parmi 0 et 1, X2 est un entier choisi parmi 0 et 1, R', R2, indépendamment l'un de l'autre représentent un groupement choisi parmi : H, les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle, les groupements ùCOùR4 et R4 représente un groupement choisi parmi : ].es alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle, R3 représente un groupement choisi parmi : H, les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle, une chaîne peptidique d'acides aminés comprenant de 1 à 30 acides aminés, * représente la configuration optique L ou D, à l'exclusion des cas où : * représente la configuration optique L et A représente ùCH=CHù, et - x1=x2= 1, R1=R2=H, R3=CH3, ou - x1= x2 = 1, R' = H, R2 = CH3, R3 = tBu, ou -x1=x2=0, R3 = tBu, A représente ùCH2ùCH2ù, x1= x2 = 1, R' = R2 = H, R3 = CH3. De façon avantageuse, dans la formule (Ic) une ou plusieurs des conditions suivantes sont satisfaites : A représente ùCH=CHù, - xi est un entier choisi parmi 0 et 1, - x2 est un entier choisi parmi 0 et 1, R', R2, indépendamment l'un de l'autre représentent un groupement choisi parmi : H, CH3, R3 représente H. De façon préférée, le composé de formule (Ic) est choisi parmi la liste 25 suivante : - N-cinnamoyl-L-alanine, - N-(4-méthoxycinnamoyl)-L-alanine, - N-(3,4-diméthoxycinnamoyl)-L-alanine, - N-coumaroyl-L-alanine, - N-cafféoyl-L-alanine, - N-cinnamoyl-D-alanine, - N-(4-méthoxycinnamoyl)-D-alanine, - N-(3,4-diméthoxycinnamoyl)-D-alar.Line, - N-coumaroyl-D-alanine, - N-cafféoyl-D-alanine. Enfin, l'invention a aussi pour objet les composés répondant à la formule (Id) ci-dessous : 10 15 20 30 35 (Id) dans laquelle : A représente un groupement choisi parmi ùCH=CHù et ùCH2ùCH2ù, xi est un entier choisi parmi 0 et 1, X2 est un entier choisi parmi 0 et 1, R', R2, indépendamment l'un de l'autre représentent un groupement choisi parmi : H, les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle, les groupements ùCOùR4 et R4 représente un groupement choisi parmi : les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle, R3 représente un groupement choisi parmi : H, les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle, une chaîne peptidique d'acides aminés comprenant de 1 à 30 acides aminés, A l'exclusion des cas où : A représente ùCH=CHù et : -x1=x2= 1, R'=R2=R3==H, ou -x1=x2=0, R3=H. De façon avantageuse, dans la formule (Id) une ou plusieurs des conditions suivantes sont satisfaites : A représente ûCH=CHû, xi est un entier choisi parmi 0 et 1, x2 est un entier choisi parmi 0 et 1, R', R2, indépendamment l'un de l'autre représentent un groupement choisi parmi : H, CH3, R3 représente H. De façon préférée, le composé de formule (Id) est choisi parmi la liste 25 suivante : - N-(4-méthoxycinnamoyl) glycine, - N-(3,4-diméthoxycinnamoyl) glycine, - N-coumaroylglycine. 20 Les composés de l'invention ont une activité antioxydante et antimicrobienne. Ils sont susceptibles d'agir sur l'interaction plaquettes-leucocytes et comme anti-inflammatoires. Ils peuvent être employés dans de nombreuses applications : • En pharmacie, en association avec; un support pharmaceutique, pour la préparation de compositions thérapeutiques destinées à la prévention ou au traitement des pathologies suivantes : cancer ; maladies inflamma:oires ; maladies cardiovasculaires telles que l'athérosclérose, l'infarctus du myocarde, l'accident vasculaire cérébral, l'hypercholestérolémie ; maladies infectieuses telles que les infections dues à des virus par exemple. • En cosmétique, en association avec un support cosmétique, comme conservateur, comme actif anti-âge, comme agent dépigmentant pour la peau et les phanères. • En alimentaire également, les composés de l'invention peuvent être utilisés comme conservateurs dans de nombreuses applications. I. PARTIE EXPERIMENTALE 1. 1 Conditions de culture de la bactérie 1.1.1 Souche bactérienne - Souche bactérienne utilisée : Bacillus subtilis subsp. subtilis. - Morphologie et physiologie de la bactérie : Bâtonnets droits (0,5-2,5 x 1,2-10 microns) isolés ou en chaînes plus ou moins longues, à spore unique très résistante. La coloration de Gram est positive, surtout en début de croissance ; elle peut également être négative. Mobiles par flagelles péritriches. Aérobies ou anaérobies facultatifs. Catalase présente. Oxydase positive ou négative. Chimio-organotrophes, prototrophes à auxotrophes exigeant plusieurs facteurs de croissance. Le peptidoglycane de la paroi est du type acide meso-diamino-pimélique. Les phospholipides dominants sont la phosphatidyléthanolamine et le phosphatidylglygérol. La formation de la spore est un processus multiphasique qui comprend sept étapes successives. La levée de la dormance implique trois processus séquentiels : l'activation, la germination et la croissance. De très nombreuses études génétiques ont été réalisées sur B. subtilis qui est l'espèce type du genre ; plus de 355 gènes ont été localisés sur la carte chromosomique. Grâce à l'extrême résistance de leur spore, les Bacillus sont ubiquistes. Leur habitat primaire est le sol où ils jouent un rôle important dans les cycles du carbone et de l'azote. Ils peuvent aussi contaminer les aliments. - Numéros de collection : DSM N° 10, NCIB 3610, ATCC 6051 (DSMZ, Deutsche Sammlung von Mikroorganismen und Zellkulturen, Brunschweig, Germany; NCIB, National Center for Biotechnology Information. ATCC, The Global Bioresource center). - Référence Bibliographique : Nakarr.,ura et al., Int. J. Syst. Bacteriol., 49:1211-1215, 1999. 1.1.2 Milieux de culture La synthèse des molécules s'effeci:ue par culture de la bactérie. Des essais ont été faits avec un milieu dépourvu de fer, comparativement à une culture réalisée dans les mêmes conditions mais en présence de fer. Les milieux de culture utilisés sont les suivants : Milieu 1. Il contient par litre : KH2PO4 0,5 g, K2HPO4 0,5 g, NaCl 0,4 g, NH4C1 0,4 g, extrait de levure (YE, de chez PANREAC (France), référence 403687.1210) 2 g. Le pH est ajusté à 7,0 avec une solution de KOH 10 M. Puis le milieu est autoclavé à 120°c pendant 20 min. En routine, des cultures de 25 mL sont réalisées dans des 10 erlenmeyers de 50 mL. Milieu 2. Celui-ci est identique au milieu 1 excepté l'extrait de levure qui est remplacé par le Yeast Nitrogen Basal (YNB, de chez DIFCO (France), référence 233520) qui ne contient pas d'acides aminés ni de sulfate d'ammonium. 1.1.3 Préparation des précurseurs (II) et (III) et de l'extrait de levure 15 Les composés (II) ont été préparés en anaérobiose (Hungate, 1969. In Methods in Microbiology, pp. 117-132. Edited by Norris, J. R. & Ribbons, D. W. London: Academic Press), stérilisés par filtration (filtre Millipore, porosité 0,22 �m), et conservés en flacons pénicilline sous N2 à température ambiante et à l'abri de la lumière (flacons couverts avec du papier d'aluminium). 20 Les solutions mères de composés (II) acides sont préparées à une concentration de 250 mM, et ont été neutralisés à pH 7 avec la soude (0,4 g de pastilles pour 25 mL de solution mère). Les composés (II) suivants ont été testés : acide cinnamique, acide 4-méthoxycinnamique, acide 3,4-diméthoxycinnamique. Les solutions mères de composés (III:) sont préparées dans les mêmes 25 conditions que les composés (II) mais à une concentration de 50 mM. Les composés (III) suivants ont été testés : glycine, L-alanine, D-alanine, L-sérine, D-sérine, L-thréonine, D-thréonine, L-valine, D-valine, L-leucine, D-leucine. L-isoleucine, D-isoleucine, L-phénylalanine, D-phénylalanine, L-tyrosine, D-tyrosine, acide L-aspartique, acide D-aspartique, acide L-glutamique, acide D-glutamique, L-asparagine, D-asparagine, L- 30 glutamine, D-glutamine, L-cystéine, D-cystéine, L-histidine, D-histidine, L-lysine, D-lysine, L-méthionine, D-méthionine, L-proline, D-proline, L-tryptophane, D-tryptophane. Les composés de formule (III) ont été testés soit isolément en utilisant un milieu de culture dépourvu d'acides aminés (c'est-à-dire avec YNB comme extrait de levure), soit en mélange. 35 Les solutions mères d'extraits de levure YE [25 % (p/v)] (yeast extract de chez FLUKA, Référence 70161) et YNB (yeast nitrogen base (YNB) de chez DIFCO également, Référence 233520) sont préparées et stérilisées à l'autoclave pendant 20 min à 121°C. 1.1.4 Conditions de culture pour la production usuelle d'un seul métabolite La souche est préalablement décongelée, puis ensemencée dans le milieu 2 contenant 1 mM de substrat (II) (préculture). Après 24 h à 30°c dans des incubateurs INFORS, à une agitation de 150 tours/min, les cultures sont inoculées avec 10 % (v/v) de la préculture dans le milieu 2 contenant 1 mM de substrat aromatique (II) et 2 mM d'acide aminé (III). Les cultures sont enfin mises en agitation dans les mêmes conditions pendant 48 h. Volume(s) de culture : les expériences ont été réalisées à partir de 10 cultures de 25 ml ou de 1 litre, dans des erlenmeyers de 50 mL ou des bouteilles de 2 L cotonnées, respectivement. 1.2 Extraction, purification et identification des composés 1.2.1 Extraction, purification Après centrifugation de la culture de 2:5 mL, le surnageant est acidifié par 15 quelques gouttes d'acide acétique glacial ou formique jusqu'à un pH final de 2, puis extrait 3 fois par de l'acétate d'éthyle dans une ampoule à décanter. Après évaporation à sec de la phase organique, deux orientations sont possibles : - Premièrement, il est possible de garder cette fraction sèche qui contient environ 90-95% du composé désiré. Un contrôle par HPLC est réalisé dans ce cas 20 en reprenant l'extrait sec dans du méthanol et en injectant 10 �l dans un système HPLC phase inverse. - Deuxièmement, l'extrait sec est repris par de l'eau acidifiée (1% HCOOH), et est déposé sur une cartouche SePack C18 (WATERS, France) qui est rincée par 10-15 ml d'eau acidifiée (1% HCOOH). La molécule est ensuite éluée par du méthanol 25 pur, l'éluat est évaporé à l'aide d'un évaporateur rotatif sous vide BUCHI et le solide obtenu placé dans un pilulier. Les composés peut aisément être conservé à température ambiante ou à 4°C sous forme solide, à -20°C sous forme liquide dans du méthanol. Dans le cas de cultures de 1 litre. le résidu sec obtenu après l'étape d'extraction à l'acétate d'éthyle est repris par de l'eau acidifiée à 1% d'acide formique puis 30 déposé sur une colonne LICHROPREP RP18 (Merck, Ref. 1.09303.0100, volume de la phase 7 ml). Celle-ci est ensuite rincée par 3 volumes d'eau acidifiée (1% HCOOH), et les composés sont finalement élués par du méthanol pur ; après évaporation, le solide est récupéré dans un flacon et pesé. 1.2.2 Contrôle de routine par HPLC 35 Après avoir prélevé 1 ml de culture bactérienne et après centrifugation (8000 g, 5 min), 400 �L de surnageant sont acidifiés par 20 �L d'acide acétique glacial puis centrifugés à nouveau (précipitation des protéines extracellulaires). Enfin, 10 à 20 �L du surnageant obtenu est injecté dans le système HPLC. L'analyse et le contrôle peuvent également s'effectuer à partir de la molécule pure obtenue ci-dessus. Les analyses HPLC sont effectuées sur une chaîne WATERS équipée d'un dégazeur à membrane, d'un injecteur RHEODYNE 7725i (La Jola, USA), d'une pompe binaire 1525, d'un four thermostaté et d'un détecteur à barrette de diode 2996. L'appareil est piloté par le logiciel Millenium 32 version 4.0. La séparation est assurée par une colonne C18 SYMETRY (150 x 4.6 mm, porosité 5�m, WATERS). La phase mobile, entraînée à un débit de 0,8 mL/min est composée de deux solvants : l'acétonitrile (A) et l'eau distillée acidifiée à 1 % d'acide acétique (B). La durée totale de l'élution est de 55 min. Le gradient utilisé comporte trois étapes : Etape 1 : de 5 à 20 % de A dans B pendant 30 min ; Etape 2, de 20 à 100 % de A dans B pendant 20 min ; Etape 3, retour à 5 % de A dans B en 5 min. L'identification des composés s'effectue, d'une part, par la détermination des temps de rétention et d'autre part grâce aux spectres UV/VIS déterminé pour chaque composé. Des molécules pures ont été préalablement préparées et servent de standards pour 1HPLC (temps de rétention) et pour la spectroscopie (UV/VIS, LC-MS, GC-MS). 1.2.3 Identification par LC-MS (couplage HPLC-spectrométrie de masse) L'HPLC est un chromatographe HP 1100 (AGILENT TECHNOLOGIES, France). La séparation est assurée par une colonne C18 SYMMETRY (Waters, France), de dimension 4,6 x 250 mm, et de porosité de 5 �m. Le système est équipé d'un injecteur automatique, d'un dégazeur à membrane, d'un four et d'un détecteur mono-longueurs d'onde variables. Le spectromètre de masse utilisé est un appareil de chez APPLIED BIOSYSTEMS (France), modèle SCIEX Api15OEX qui utilise le mode d'ionisation par électro-spray. L'élution, l'acquisition et le traitement des données sont assurés respectivement par les logiciels CHEMSTATION et MASSCHROM version 1.1. Conditions opératoires : Débit 0,3 ml/min ; température du four 30°C ; longueur d'onde (2max) fixée à 278 nm dans le cas où le composé (II) n'est pas ramifié en position 3 ou 4 du cycle (xi = x2 = 0) ; longueur d'onde ().max) fixée à 310 nm dans les autres cas. La phase mobile est formée par un gradient de deux solvants : H2O milli-Q acidifiée à l'acide formique à 1% (solvant A) et acétonitrile pur (solvant B). Le gradient utilisé s'effectue comme suit : étape 1, de 5 à 30% de B pendant 60 min ; étape 2 : de 30 à 100% de B pendant 30 min (durée totale 90 min). Les conditions de masse sont les suivantes : valeurs de m/z de 30 à 3000 uma (unité de masse atomique), temps d'acquisition de 15 ms/scan, voltage du cône 20 ou 60 Volts, voltage du capillaire 4500 Volts, en mode positif et négatif, pression du nébulisateur de 45 psi. 1.2.4 Identification par GC-MS (couplage chromatographie en phase gazeuse-spectrométrie de masse) Préalablement, sur le composé purifié solide ou un extrait sec contenant un mélange de composés, on procède à une réaction de dérivation par le BSTFA+TMCS 5 ou d'estérification méthylique. Dérivation Les réactions ont lieu dans un tube CBROMACOL de 2 ml scellé par un bouchon et un septum hermétique. Deux types de dérivation ont été réalisés dans ce travail : 10 - Trimethylsilylation avec le BSTFA contenant un catalyseur : Cette technique est utilisée pour les composés aromatiques lorsque la réaction de dérivation est plus difficile, le catalyseur étant ici le TMCS (triméthylchlorosilane). A 0,3-1 mg d'échantillon sont ajoutés 100 gL de pyridine et 100 �L de réactif BSTFA contenant 1% de TMCS (triméthylchlorosilane) (de chez SIGMA-ALDRICH, référence T6381). La solution 15 est mise à l'étuve pendant 15 à 20 min à 60°C. Elle est ensuite évaporée sous azote et le résidu sec repris dans le méthanol ou l'acétate d'éthyle (100 à 500 �L) pour analyse en GC-MS. - Estérification méthylique : Cette méthode a été mise au point spécifiquement pour les composés N-cinnaraoyl amides d'acides aminés. 100 �L de PFPA 20 (anhydride pentafluoropropionique, SIGMA-ALDRICH N° 394904) sont ajoutés à environ 0,3-1 mg d'échantillon dissout dans 100 tL de méthanol. La solution obtenue est ensuite mise à l'étuve pendant 30 min à 60°C. Le PFPA est évaporé sous azote et le résidu sec est repris dans de l'acétate d'éthyle (100 à 5001.4 pour analyse en GC-MS. Analyses 25 Les analyses ont été menées avec un appareil GC-MS (AGILENT TECHNOLOGIES) composé d'un chromatographe 6890N GC system, d'un spectromètre de masse 5973 Mass Selectiv Detector équipé d'une source d'ion à impact électronique et d'un analyseur de type quadrupôle, d'un logiciel d'acquisition MSD-CHEMSTATION ainsi que des banques (NIST, WILEY). Les composés sont séparés à l'aide d'une colonne 30 capillaire DB-1MS (30 m x 0,25 mm, de chez JW Scientific) et dont les limites de température sont comprises entre -60°C et 350°C. La phase mobile est l'hélium. La pression dans la colonne est de 10,5 psi et le débit de 1 mL/min. La température de l'injecteur (Inlet) est de 280°C. La programmation du gradient de température est la suivante : 1 min à 100°C, puis croissant de 100 à 260°C à raison de 4°/min, puis 10 min à 35 260°C. La durée totale de l'élution est de 51 min. Les composés aromatiques sont préalablement dérivés pour les rendre plus volatils. II. RESULTATS 2.1 Figure Figure 1. Chromatogramme HPLC des composés N-cinnamoyl amides obtenus à partir d'une culture réalisée sur extrait de levure. Culture de 25 mL réalisée dans le milieu 1. 1, acide 4-méthoxy-N-cinmamoyl-L-sérine ; 2, acide 4-méthoxy-N-cinnamoylglycine ; 3, acide 4-méthoxy-N-cinnamoyl-L-thréonine ; 4, acide 4-méthoxy-N- cinnamoyl-(D,L)-alanine ; 5, acide 4-méthoxycinnamique, substrat résiduel dans la culture. 2.2 Molécules synthétisées à partir du milieu 1 Le milieu 1 contient de l'extrait de levure ; il n'y a pas d'apport supplémentaire d'acides aminés dans ce milieu, l'extrait de levure en contient déjà. Lorsque la bactérie croit dans ce milieu en présence d'acide cinnamique, ou d'acide 4- méthoxycinnamique, ou encore d'acide 3,4-diméthoxycinnamique, elle fabrique des composés N-cinnamoyl amides d'acides aminés uniquement lorsque ce milieu est dépourvu de fer, c'est-à-dire dans les conditions décrites dans la partie expérimentale. En effet, il n'y a pas de synthèse de molécules du type N-cinmamoyl amides en présence de fer (0,3 mg/L additionnés dans le milieu), cela après analyse par HPLC et contrôle des structures chimiques par LC-MS et GC-MS. L'extraction du surnageant acidifié par de l'acétate d'éthyle et l'analyse des molécules en LC-MS nous ont permis de mettre clairement en évidence 5 molécules (Figure 1). Ainsi, la L-sérine, la L-thréonine, la L- ou la D- alanine apportées par le milieu de culture sont condensées avec le précurseur (II) pour former les acides 4-méthoxy-N- cinnamoyl-L-sérine, 4-méthoxy-N-cinnam.oyl-L-thréonine, 4-méthoxy-N-cinnamoyl-L-alanine et 4-méthoxy-N-cinnamoyl-D-alanine. L'enzyme ne fait aucune différence entre les deux formes L et D de l'alanine. On a également obtenu en petite quantité l'acide 4-méthoxy-N-cinnamoyl-glycine. En prenant l'acide cinnamique ou l'acide 3,4-diméthoxycinnamique pour le composé (II), on obtient de la même manière pour chaque substrat les molécules correspondantes (dérivés amides de L-sérine, L-thréonine, L-alanine et D-alanine, glycine). Après hydrolyse de la liaison amide par reflux en présence d'H2SO4 pendant 6 heures, extraction de la solution à l'acétate d'éthyle et évaporation à sec de la phase aqueuse, l'analyse GC-MS après dérivation au BSTFA révèle la présence de glycine, de sérine, de thréonine et d'alanine, permettant ainsi de confirmer les structures des molécules. Conclusions : On observe la formation des molécules 1, acide 4-méthoxy-N-cinnamoylsérine ; 2, acide 4-méthoxy-N-cinnamoylglycine ; 3, acide 4-méthoxy-N-cinnamoylthréonine ; 4, acide 4-méthoxy-N-cinnamoylalanine . La sérine, la thréonine, l'alanine et probablement la glycine sont présents dans l'extrait de levure YE. Une ou plusieurs enzymes de la bactérie font réagir ces acides aminés sur le précurseur (II) (ici l'acide 4-méthoxycinnamique), les acides aminés étant apportés par l'extrait de levure. 2.3 Cultures réalisées avec le milieu 2 pour la production orientée d'une seule molécule Un milieu de culture (milieu 2) dépourvu d'acides aminés permet d'obtenir une seule molécule à la fois, cela par l'addition de l'acide aminé (composé (III) dans ce même milieu). De cette manière, cela a permis de connaître la stéréosélectivité de la réaction vis-à-vis de l'acide aminé (D ou L). Quatre cultures ont été réalisées en présence de YNB (extrait de levure ne contenant pas d'acides aminés, ni de sulfate d'ammonium), en y ajoutant un seul acide aminé par culture à une concentration de 2 mM, et en présence d'acide 4-méthoxycinnamique à 1 mM. Après 72 heures de culture, l'analyse par HPLC montre que, comparativement à la Figure 1, le substrat aromatique est totalement transformé. De plus, dans ces conditions, un seul composé N-cinnamoyl amide est produit. Les caractéristiques spectrales et chimiques de N-cinnamoylamides obtenus à partir de l'acide 4-méthoxycinnamique sont: résumées en exmeple dans le Tableau 1 ci-dessous. Composé RT ? max Masse de l'ester Production4 (min) ~ (nm) Z méthyliques (mg/L) Acide 4-méthoxycinnamique 38,35 307 220 0 4-méthoxy-N-cinnamoyl-L-sérine 31.96 307 279 198 4-méthoxy-N-cinnamoyl-D-sérine - - 279 0 4-méthoxy-N-cinnamoyl-L-thréonine 35.26 307 293 176 4-méthoxy-N-cinnamoyl-D-thréonine - - 293 0 4-méthoxy-N-cinnamoyl-L-alanine 36,43 307 263 191 4-méthoxy-N-cinnamoyl-D-alanine 36,44 307 263 173 4-méthoxy-N-cinnamoylglycine 34.76 307 249 ND Tableau 1. Caractéristiques et taux de production des composés N-cinnamoyl amides d'acides aminés obtenus par culture de la bactérie dans le milieu 2. Composé (II), acide 4-méthoxycinnamique 1 mM ; composé (III), l'acide aminé mentionné ici à 2 mM. 1. RT, temps de rétention en HPLC déterminé sur une chaîne (cf. partie expérimentale). 2. Longueur d'onde maximale des molécules déterminée à partir de l'analyse HPLC. 3. Masse de l'ester méthylique calculée. Seuls, les dérivés de la glycine et de l'alanine montrent un ion moléculaire équivalent à cette valeur en GC-MS ; pour les dérivés de la sérine et de la thréonine, ils forment en GC-MS un alcène correspondant à la réaction de déshydratation de la fonction alcool primaire et secondaire, respectivement. 4. Les quantités ont été déterminées pour 1 litre de culture après 72 h, après extraction du surnageant à l'acétate d'éthyle et purification sur support chromatographique C18 (cf. partie expérimentale). ND, non déterminé. 2.4 Stéréosélectivité de l'enzyme vis-ii-vis de l'acide aminé (D ou L) Les expériences montrent que l'enzyme bactérienne lie la L-sérine et la L-thréonine (et non la forme D) sur le substrat aromatique, alors qu'elle ne différencie pas la L- ou la D-alanine. La glycine, quant à elle, ne possède pas de carbone asymétrique (cf. Tableau 1 à titre d'exemple). 2.5 Relations structure aromatique / activité L'enzyme n'agit que sur les composés cinnamiques non hydroxylés. Nous avons également testés suivant le même protocole plusieurs substrats aromatiques : les acides p-hydroxybenzoiques, protocatéchuique, cinnamique, p-coumarique, férulique, 4-méthoxycinnamique, 3,4-diméthoxycinnamique, 3,4,5-triméthoxycinnamique, et catéchol. Seuls, les acides cinnamique, 4-méthoxycinnamique, et 3,4-diméthoxycinnamique, ont été transformés en dérivés N-cinnamoylamides. Ainsi, deux remarques sont à évoquer ici : (1) La synthèse s'effectue avec des composés de structure équivalente à la formule (II). (2) Lorsqu'un seul groupement ûOH est présent sur le cycle aromatique (position 3, 4 ou 5), la synthèse ne se fait plus. 2.6 Taux de production à partir d' l litre de culture (milieu 2) Un litre de culture (milieu 2) contenant 2 mM d'un seul acide aminé (choisi parmi : L-alanine, D-alanine, L-sérine, L-thréonine) et 1 mM d'acide 4- méthoxycinnamique (composé (II)), est mis à incuber à 30°C pendant 72 h (agitation 150 tours/min). Après extraction à l'acétate d'éthyle, purification sur support C18 comme décrit ci-dessus, et contrôle de la structure par HPLC, LC-MS et GC-MS, on obtient les quantités suivantes (cf. Tableau 1) : 4-méthoxy N-cinnamoyl-L-serine : 198 mg pour 1 litre 4-méthoxy N-cinnamoyl-L-threonine : 176 mg pour 1 litre 4-méthoxy N-cinnamoyl-L-alanine : 191 mg pour 1 litre 4-méthoxy N-cinnamoyl-D-alanine : 173 mg pour 1 litre REVENDICATIONS1. Procédé de préparation de molécules répondant à la formule (I) ci-dessous : R (1) dans laquelle : A représente un groupement choisi parmi ûCH=CHû et ûCH2ûCH2û, xi est un entier choisi parmi 0 et 1, x2 est un entier choisi parmi 0 et 1, R', R2, indépendamment l'un de l'autre, représentent un groupement choisi parmi : H, les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle, les groupements ûCOûR4 et R4 représente un groupement choisi parmi : les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle, R3 représente un groupement choisi parmi : H, les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle, une chaîne peptidique d'acides aminés comprenant de 1 à 30 acides aminés, * représente la configuration optique L ou D de l'acide aminé ûNHCHRûCOOû, * peut représenter l'une ou l'autre des configurations suivant le choix de R, R représente une chaîne latérale d'acide aminé choisie parmi : ûH (glycine), ûCH3 (L-alanine, D-alanine), ûCH2OH (L-sérine), ûCHOHûCH3 (L-thréonine), û CH2OR5 (L-sérine protégée sur sa fonction hydroxyle), ûCHOR5ûCH3 (L-thréonine protégée sur sa fonction hydroxyle) et R5 représente un groupement choisi parmi : H, les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle, les groupements ûCOûR6 et R6 représente un groupement choisi parmi : les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle, ce procédé comportant au moins une étape de culture d'au moins une bactérie choisie parmi les Bacillaceae, en présence d'au moins deux substrats sélectionnés parmi ceux répondant aux formules (II) et (III) ci-dessous : OH R H N~ LCOOR3 2 dans lesquelles A, xi, x2, R3,* et R ont la même définition que dans la formule (I), R', R2, indépendamment l'un de l'autre représentent un groupement choisi parmi : les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle, les groupements ùCOùR4 et R4 représente un groupement choisi parmi : les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle. 2. Procédé selon la revendication 1 dans lequel la bactérie est choisie parmi celles appartenant au genre Bacillus, et avantageusement parmi : Bacillus subtilis, Bacillus licheniformis, Bacillus thermoamylovorans, Bacillus (ou Geobacillus) stearothermophilus, Bacillus caldotenax. 3. Procédé selon la revendication 2, dans lequel la bactérie est choisie parmi : • Bacillus subtilis subsp. Spizizenii : DSM 15029 • Bacillus licheniformis : DSM 13, ATCC 14580, NCIB 9375 • Bacillus thermoamylovorans : DSM 13307 • Bacillus (ou Geobacillus) stearothermophilus : DSM 22, ATCC 12980, NCIB 8923 • Bacillus caldotenax : DSM 406 8. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, dans lequel dans la formule (I) une ou plusieurs des conditions ci-dessous sont satisfaites : A représente un groupement ùCHùCHù , R', R2, indépendamment l'un de l'autre représentent un groupement choisi parmi : H, un groupement méthyle, R3 représente H, R représente une chaîne latérale d'acide aminé choisie parmi : ùH (glycine), ùCH3 (L-alanine, D-alanine), ùC [420H (L-sérine), ùCHOHùCH3 (L-thréonine), 9. Procédé selon l'une quelconque dcs revendications 1 à 4, dans lequel la culture de la bactérie est faite dans un milieu qui comporte des sels minéraux et un extrait de levure. 5 10 15 20 25 356. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 5, dans lequel la culture de la bactérie est faite dans un milieu qui comporte, outre le ou les acides aminés de formule (III), au moins un autre acide aminé choisi parmi : la lysine, la proline, la cystéine. 7. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 6, dans lequel le précurseur (II) est introduit dans le milieu de culture sous forme d'un extrait végétal. 8. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 7, qui comporte avantageusement les étapes suivantes : - centrifugation, - récupération du surnageant, - purification du produit (I). 9. Utilisation du procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 8 pour la préparation d'une molécule choisie parmi : - N-cinnamoyl-glycine, - N-cinnamoyl-L-alanine, - N-cinnamoyl-D-alanine, - N-cinnamoyl-L-sérine, - N-cinnamoyl-L-thréonine, - N-(4-méthoxycinnamoyl)-glycine, - N-(4-méthoxycinnamoyl)-L-alanine, - N-(4-méthoxycinnamoyl)-D-alanine, - N-(4-méthoxycinnamoyl)-L-sérine, - N-(4-méthoxycinnamoyl)-L-thréonine - N-(3,4-diméthoxycinnamoyl)-glycine, - N-(3,4-diméthoxycinnamoyl)-L-alanine, - N-(3 ,4-diméthoxycinnamoyl)-D-alanine, - N-(3,4-diméthoxycinnamoyl)-L-sérine, - N-(3,4-diméthoxycinnamoyl)-L-thréonine, - N-coumaroyl-L-thréonine, - N-cafféoyl-L-thréonine, - N-coumaroyl-L-sérine - N-cafféoyl-L-sérine - N-coumaroyl-L-alanine, - N-cafféoyl-L-alanine, - N-coumaroyl-D-alanine, - N-cafféoyl-D-alanine, - N-coumaroyl-glycine, - N-cafféoyl-glycine.10. Composé, susceptible d'être obtenu par le procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 9, répondant à la formule (Ia) ci-dessous : R50CH3 (la) dans laquelle : A représente un groupement choisi parmi ûCH=CHû et ûCH2ûCH2û, xi est un entier choisi parmi 0 et 1, x2 est un entier choisi parmi 0 et 1, R1, R2, indépendamment l'un de l'autre représentent un groupement choisi parmi : H, les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle, les groupements ûCOûR4 et R4 représente un groupement choisi parmi : les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle, R3 représente un groupement choisi parmi : H, les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle, une chaîne peptidique d'acides aminés comprenant de 1 à 30 acides aminés, * représente la configuration optique L, R5 représente un groupement choisi parmi : H, les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle, les groupements ûCCNûR6 et R6 représente un groupement choisi parmi : les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle. 11. Composé, susceptible d'être obtenu par le procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 9, répondant à la formule (Ib) ci-dessous :R50 (lb) dans laquelle : A représente un groupement choisi parmi ûCH=CHû et ûCH2ûCH2û, xi est un entier choisi parmi 0 et 1, X2 est un entier choisi parmi 0 et 1, RI, R2, indépendamment l'un de l'autre représentent un groupement choisi parmi : H, les alkyles en CI-C6, le phényle, le benzyle, les groupements ûCOûR4 et R4 représente un groupement choisi parmi : les alkyles en CI-C6, le phényle, le benzyle, R3 représente un groupement choisi parmi : H, les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle, une chaîne peptidique d'acides aminés comprenant de 1 à 30 acides aminés, * représente la configuration optique L, R5 représente un groupement choisi parmi : H, les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle, les groupements ûCOûR6 et R6 représente un groupement choisi parmi : les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle, à l'exclusion des composés suivants où : A représente ûCH = CHû, x1 = 1, x2 = 1, et - RI = R2 = R3 = H, R5 = H, ou - R1=R2=H, R3=CH3sR5=H,ou - RI = R2 = H, R3 = CH3, R5 = CH3COû, ou - RI = R2 = CH3COû, R3 = CH3, R5 = CH3COû, ou - RI=R2=CH3COû, R3 = H, R5 = H, ou - RI = R2 = CH3COû, R3 = tBu, R5 = tBu 12. Composé, susceptible d'être obtenu par le procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 9, répondant à la formule (Ic) ci-dessous : 25CH3 Oc) dans laquelle : A représente un groupement choisi parmi ùCH=CHù et ùCH2ùCH2ù, x1 est un entier choisi parmi 0 et 1, x2 est un entier choisi parmi 0 et 1, RI, R2, indépendamment l'un de l'autre représentent un groupement choisi parmi : H, les alkyles en CI-C6, le phényle, le benzyle, les groupements ùCOùR4 et R4 représente un groupement choisi parmi : les alkyles en CI-C6, le phényle, le benzyle, R3 représente un groupement choisi parmi : H, les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle, une chaîne peptidique d'acides aminés comprenant de 1 à 30 acides aminés, * représente la configuration optique L ou D, à l'exclusion des cas où : * représente la configuration optique L et A représente ùCH=CHù, et -x1=x2=1, R'=R2=H, R3 = CH3, ou - x1= x2 = 1, R' = H, R2 = CH3, R3 = tBu, ou - X,=X2=0, R3=tBu, A représente ùCH2ùCH2ù, et x1= x2 = 1, R' = R2 = H, R3 = CH3. 13. Composé, susceptible d'être obtenu par le procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 9, répondant à la formule (Id) ci-dessous : 26 20(Id) dans laquelle : A représente un groupement choisi parmi ùCH=CHù et ùCH2ùCH2ù, x1 est un entier choisi parmi. 0 et 1, x2 est un entier choisi parmi. 0 et 1, R1, R2, indépendamment l'un de l'autre représentent un groupement choisi parmi : H, les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle, les groupements ùCOùR4 et R4 représente un groupement choisi parmi : les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle, R3 représente un groupement choisi parmi : H, les alkyles en C1-C6, le phényle, le benzyle, une chaîne peptidique d'acides aminés comprenant de 1 à 30 acides aminés, A l'exclusion des cas où : A représente ùCH=CHù et : -x1=x2= 1, R1=R2=R3=H, ou - x1=x2=0,R3=H 14. Composé selon l'une des revendications 10 à 13, choisi parmi la liste suivante : - N-cinnamoyl-L-alanine, - N-(4-méthoxycinnamoyl)-L-alanine, - N-(3,4-diméthoxycinnamoyl)-L-alanine, - N-coumaroyl-L-alanine, - N-cafféoyl-L-alanine, - N-cinnamoyl-D-alanine, - N-(4-méthoxycinnamoyl)-D-alanine, - N-(3,4-diméthoxycinnamoyl)-D-alanine, - N-coumaroyl-D-alanine, - N-cafféoyl-D-alanine, - N-cinnamoyl-L-sérine, - N-(4-méthoxycinnamoyl)-L-sérine, - N-(3,4-diméthoxycinnamoyl)-L-sérine, 20 25 30 2932179 2 8 - N-coumaroyl-L-sérine, - N-(4-méthoxycinnamoyl) glycine, - N-(3,4-diméthoxycinnamoyl) glycine, - N-coumaroylglycine, 5 - N-cinnamoyl-L-thréonine, - N-(4-méthoxycinnamoyl).-L-thréonine, - N-(3,4-diméthoxycinnamoyl)-L-thréonine, - N-coumaroyl-L-thréonine, - N-cafféoyl-L-thréonine. 10 15. Médicament comprenant un composé selon l'une quelconque des revendications 10 à 14 dans un support pharmaceutiquement acceptable. 16. Composition cosmétique comprenant un composé selon l'une quelconque des revendications 10 à 14 dans un support cosmétiquement acceptable. 17. Utilisation d'un composé selon l'une quelconque des revendications 15 10 à 14 comme agent conservateur.