Brevet FR2917750A1 — publié le 20081226

Procédé de clivage enzymatique de polysaccharides issus des algues La présente invention se rapporte à un procédé de clivage enzymatique de polysaccharides extraits des algues du genre Ulva. Les polysaccharides sont des polymères et ils constituent les éléments essentiels des algues vertes du genre Ulva. En outre, ces algues vertes sont très largement répandues sur les côtes de tous les continents et par conséquent largement disponibles à faible coût. io Ces polymères sont dénommés ulvane et ils contiennent des oses acides, notamment l'acide glucuronique (GIcpA) et l'acide iduronique (IdopA) et aussi des oses neutres dont le rhamnose (Rhap), le galactose (Galp), le glucose (Glcp) et le xylose (Xylp). En outre, dans ces polymères, le rhamnose est substitué par un groupement sulfate sur le 15 carbone 3, que l'on dénommera, rhamnose 3 sulfate (Rhap3S). Ces polymères contiennent des composés intéressants, en particulier l'acide iduronique et le rhamnose 3 sulfate, notamment pour des applications thérapeutiques ou cosmétiques. Cependant, les oses de ces polymères sont enchaînés de façon 20 relativement aléatoire, de sorte qu'il est malaisé d'extraire une composition relativement homogène. Deux séquences majoritaires, dénommées acides aldobiuroniques, incluant lesdits composés intéressants, ont toutefois été identifiées, une première séquence [-4)-p-D-GIcpA-(1->4)-a-L-Rhap3 sulfate-(1-*]n et une seconde séquence [-*4)- 25 a-L-IdopA-(1-4)-a-L- Rhap3 sulfate-(1-*]m. Des séquences contenant des enchaînement d'acide glucuronique soit : [-X4)43-D-GIcpA-(1 -4)-[i-o-GIcpA-(I-*]X ont également été décrites ; ces séquences de glucuronane pouvant être intégrées dans les 2 séquences majoritaires constituées des acides aldobiuroniques précités. Cependant, sans que cela ait été prouvé, 30 ces séquences de glucuronane pourraient aussi être présentes sur un polymère différent de l'ulvane, mais extrait de l'algue en même temps que 2 2917750 le polymère constitué majoritairement de séquences d'acides aldobiuroniques. Ces composés sont respectivement comparables aux glycosaminoglycanes, notamment de l'héparine et de l'héparane sulfate, 5 et aux, chondroitine sulfate et dermatane sulfate. Toutefois, aussi intéressant qu'ils soient, ces polymères extraits des algues vertes, présentent une trop grande hétérogénéité pour pouvoir être utilisés et incorporés tels quels dans des préparations pharmaceutiques ou cosmétiques. Aussi, il a été imaginé de les fractionner en composés io élémentaires au moyen de compositions enzymatiques spécifiques. Ainsi, une première enzyme de la classe des Iyases, la glucuronane lyase, a déjà été identifiée, et elle est active pour cliver les séquences de glucuronane présentes dans des polysaccharides de type ulvane. En outre, cette enzyme est obtenue à partir d'un micro-organisme fongique, 15 en particulier de la souche Trichoderma CNCM 1-3400. On pourra se reporter au document FR 2 885 911, lequel décrit ce micro-organisme pour dégrader les séquences de glucuronane des polysaccharides. Toutefois, cette composition enzymatique ne permet pas de cliver précisément les séquences majoritaires constituées d 'acides 20 aldobiuroniques précitées, dont le fruit présente un intérêt. II est néanmoins connu, une autre composition enzymatique, de la classe des lyases, l'ulvane lyase, qui permet, elle, a priori, le clivage des première et seconde séquences d'acides aldobiuroniques précitées au niveau des liaisons osidiques, entre les unités Rhap3 sulfate et GlcpA 25 d'une part, et entre les unités Rhap3 et IdopA d'autre part, et selon une réaction de R élimination. Cette composition enzymatique est décrite dans la publication de M. Lahaye et al. (Carbohydrate Research 1997, 304 :325-333) et elle est issue d'une bactérie marine. Elle permet de fractionner les polymères 30 d'ulvane en oligomères. Cependant, la composition enzymatique décrite dans cette publication et notamment son activité enzymatique par rapport au substrat 3 2917750 fait de polymères ulvane est relativement faible, et au surplus, elle décroît rapidement au fur et à mesure de la dégradation, de sorte qu'il est nécessaire de réintroduire des enzymes de ladite composition enzymatique pour que la dégradation se poursuive. En effet, la publication 5 précitée indique que la dégradation de l'ulvane par l'extrait enzymatique isolé est lente et atteint rapidement un plateau. Ainsi il y est décrit, que l'augmentation des sucres réducteurs sur l'ulvane soumis à la dégradation de l'enzyme, augmentation qui est logiquement identique à celle des sucres en position terminale non réductrice, est de 7,1% par rapport au dosage de ces sucres avant l'incubation en présence d'enzyme ; de surcroît, cette dégradation obtenue en 200 minutes nécessite des additions répétées d'enzyme, en moyenne toutes les 25 minutes, pour compenser l'inactivation de l'enzyme par des produits de dégradation. Par conséquent, il n'est pas envisageable d'utiliser cette composition enzymatique, pour produire industriellement des oligomères de compositions et de poids moléculaire homogènes, car le coût d'obtention de ces oligomères serait prohibitif. Aussi, un problème qui se pose et que vise à résoudre la présente invention est de fournir, selon un premier aspect, un procédé de clivage enzymatique qui permette non seulement de cliver les polymères ulvane entre les unités Rhap3 sulfate et GlcpA, et entre les unités Rhap3 et IdopA, mais aussi qui permette de le faire avec une productivité permettant d'obtenir les oligomères de taille réduite à un coût avantageux. Dans le but de résoudre ce problème, la présente invention propose un procédé de clivage enzymatique de polysaccharides comprenant une première séquence [ù4)-pi-D-GIcpA-(1->4)-a-L-Rhap3 sulfate-(Iù>]n et une seconde séquence [-*4)-a-L-IdopA-(1-*4)-a-L-Rhap3 sulfate-(1-q]m, la première et la seconde séquences étant respectivement constituées de deux unités oses reliées par une liaison osidique, ledit procédé étant du type selon lequel : on fournit lesdites séquences de polysaccharide ; on fournit un micro-organisme apte à produire une substance enzymatique de la classe des lyases ; et, on met en contact ladite substance 4 2917750 enzymatique avec lesdites séquences de polysaccharide de manière à provoquer le clivage de la liaison osidique selon une réaction de [3 élimination, suivant le mécanisme schématique : O- OH H3C H3C SO3Na O SO3Na O OH OH HO OH 5 Selon l'invention, on choisit un micro-organisme appartenant aux bactéries du genre Ochrobactrum pour produire ladite substance enzymatique. Ainsi, une caractéristique de l'invention réside dans la mise en évidence de ces bactéries du genre Ochrobactrum, qui produisent une 10 substance enzymatique apte à venir couper spécifiquement la liaison osidique par 13-élimination sans pour autant entraîner l'apparition de produits de dégradation qui viendraient perturber précisément l'activité enzymatique. Et ce, contrairement aux substances enzymatiques décrites dans l'art antérieur, et issues de bactéries marines, dont l'activité 15 enzymatique est très rapidement interrompue, et pour lesquelles il est alors nécessaire d'introduire dans le milieu réactionnel, de nouvelles substances enzymatiques afin que la dégradation se poursuive. Au surplus, la 13 élimination correspond à un clivage de la liaison osidique sur une séquence osidique générant 2 fragments de molécules 20 saccharidiques et faisant apparaître au niveau de l'extrémité terminale non réductrice créée, un hétérocycle présentant une liaison éthylénique entre le carbone 4 et le carbone 5, le résidu de l'extrémité terminale non réductrice correspondant à un acide 4-déoxy-(hex-4-ène) pyranosyluronique. Par ailleurs, comme on l'expliquera ci-après, grâce à 25 l'apparition de cette liaison éthylénique, on mesurera aisément la vitesse de réaction en spectroscopie UV, entre 230 et 240 nm et plus précisément à 235 nm. COONa 5 2917750 Aussi, on observera que le clivage entre les unités Rhap3 sulfate et GlcpA, et entre les unités Rhap3 et IdopA, conduit exactement aux mêmes produits de réaction, bien que d'un côté, pour la première séquence on ait dans le polymère l'acide glucuronique, tandis que pour la 5 seconde séquence on ait l'acide iduronique. Cela tient à ce que ces deux acides diffèrent simplement par la configuration de leur carbone 5. Ainsi, puisque le carbone 5 est initialement hybridé sp3 et qu'ensuite, il devient hybridé sp2, après réaction de élimination, il n'y a plus qu'une configuration possible. lo Ainsi, non seulement la substance enzymatique obtenue grâce à la bactérie du genre Ochrobactrum permet d'obtenir des oligomères de faible poids moléculaire avec une plus grande productivité que les substances enzymatiques obtenues avec des bactéries marines, mais au surplus le procédé selon l'invention permet d'obtenir des oligomères 15 homogènes avec une productivité importante. De façon particulièrement avantageuse, la souche bactérienne choisie appartient à l'espèce Ochrobactrum tritici laquelle se retrouve dans le sol. Plus précisément, cette souche bactérienne notée PEC.2 porte la référence CNCM 1-3776, dûment déposée et enregistrée auprès 20 de la Collection Nationale de Cultures de Microorganismes (CNCM) au siège de l'institut Pasteur, 25 rue du Docteur Roux, F-75724 Paris cedex 15. Selon un mode préféré de mise en oeuvre de l'invention, on incube lesdites bactéries avec un substrat polysaccharidique de manière à 25 produire ladite substance enzymatique, et ensuite on isole les bactéries incubées de ladite substance enzymatique afin d'utiliser cette dernière pour produire les oligomères recherchés. Avantageusement, ladite substance enzymatique est purifiée après que les bactéries ont été incubées, de manière à retenir exclusivement 30 l'enzyme spécifique du clivage de la liaison osidique. Ainsi, l'activité enzymatique de la substance enzymatique qui ne contient alors que 6 2917750 l'enzyme, est alors optimale si on la rapporte à la quantité de molécules clivées par minute, et par quantité de ladite substance enzymatique. Préférentiellement d'ailleurs, la substance enzymatique obtenue grâce la souche bactérienne de l'espèce Ochrobactrum, provoque le 5 clivage d'un nombre de liaisons osidiques desdites séquences de polysaccharide compris entre 6.1016 et 6.1020 par minute et par milligramme de ladite substance enzymatique, par exemple entre 6.1017 et 6.1019, et plus précisément encore, 6.1018. Ainsi qu'on l'expliquera ci-après, cette activité enzymatique correspond sensiblement à 10 U/mg, io selon la mesure usuelle ; une U d'enzyme représentant ici, la quantité d'extrait enzymatique qui entraîne l'apparition d'une micro-mole d'acide 4-déoxy-(hex-4-ène) pyranosyluronique. Selon un autre mode préféré de mise en oeuvre de l'invention, lesdits polysaccharides comprenant en outre des séquences de glucuronane à 15 l'intérieur des séquences d'acides aldobiuroniques mais aussi, très probablement du glucuronane sous la forme d'un polymère distinct extrait en même temps que le polymère riche en acides aldobiuroniques, on élimine alors ledit glucuronane. Ainsi, on obtient un polysaccharide contenant essentiellement les deux acides aldobiuroniques et contenant 20 encore les séquences de glucuronane piégées dans les séquences [-*4)-13-e-GIcpA-(1-*4)-a-L-Rhap3 sulfate-(1 -*]n, [-*4)-a-L-IdopA-(1-*4)-a-LRhap3 sulfate-(1-qm ; mais le polysaccharide extrait de l'algue est débarrassé du glucuronane libre. Comme on l'expliquera ci-après, grâce à cette séparation on privilégie l'activité de l'ulvane lyase. 25 Selon encore un autre mode préféré de mise en oeuvre de l'invention lesdits polysaccharides comprennent en outre des héparanes et/ou des héparanes sulfates incluant des polymères constitués de [-*4)-[i-e-GlcpA-2-sulfate-(1-*4)-a-e-GlcNsulfo-6-sulfate-(I-*]x et/ou de [-*4)-a-L-IdopA-2-sulfate (1 -*4)-a- D-GlcNsulfo-6-sulfate -(1 -*]y. 30 La dégradation du polymère permet alors d'obtenir, selon les quantités d'enzyme employées et la durée d'incubation, des oligomères d'héparane et d'héparane sulfate de petit degré de polymérisation. 7 2917750 Selon un autre aspect, la présente invention concerne une substance enzymatique adaptée au procédé de clivage enzymatique ci-dessus décrit, ladite substance enzymatique étant obtenue à partir d'un micro-organisme appartenant aux bactéries du genre Ochrobactrum. Plus 5 précisément ces bactéries appartiennent à l'espèce Ochrobactrum tritici dont la souche enregistrée porte la référence CNCM 1-3776. Selon encore un autre aspect, la présente invention concerne également des polysaccharides clivés obtenus par un procédé de clivage enzymatique du type décrit ci-dessus. io D'autres particularités et avantages de l'invention ressortiront à la lecture de la description faite ci-après de modes de réalisation particuliers de l'invention, donnés à titre indicatif mais non limitatif, en référence aux dessins annexés sur lesquels : - la Figure 1 représente un diagramme montrant une activité 15 enzymatique spécifique de différents éléments d'une substance enzymatique ; - la Figure 2 montre un graphique illustrant une mesure de l'activité enzymatique de ladite substance enzymatique ; - la Figure 3 montre deux spectres superposés et correspondant à 20 des produits de dégradation de l'activité enzymatique selon un premier mode de mise en oeuvre, l'un réalisé en chromatographie d'exclusion stérique sur Biogel P2, et l'autre en-dessous, réalisé en spectroscopie de masse ; et, - la Figure 4 montre un spectre réalisé en chromatographie 25 d'exclusion stérique sur Biogel P6, correspondant à des produits de dégradation de l'activité enzymatique selon un second mode de mise en oeuvre. De manière avantageuse, on choisira un substrat incluant des séquences de polysaccharides issues d'une algue du genre Ulva et 30 dénommé ulvane. Ces séquences de polysaccharide de type ulvane, comprennent notamment, une première séquence [ù>4)-(3-D-GIcpA-(1 _>4)- 8 2917750 a-L-Rhap3 sulfate-(1- ],i et une seconde séquence [-+4)-a-L-IdopA-(1->4)-a-L-Rhap3 sulfate-(1-*]m. Ces polymères d'ulvane sont appauvris en glucuronane pour optimiser la production de l'activité ulvane lyase. Toutefois, pour certaines 5 applications, on dégradera par voie enzymatique, des polymères d'ulvane contenant du glucuronane. Avant de décrire ce mode de séparation, on décrira le mode de préparation d'une souche bactérienne de l'espèce Ochrobactrum tritici PEC2 et en particulier la souche portant la référence CNCM 1-3776, io laquelle est apte à produire une substance enzymatique et précisément une ulvane lyase. Cette ulvane lyase est adaptée à provoquer le clivage de la liaison osidique selon une réaction de (3 élimination, entre des unités Rhap3 sulfate et GIcpA, et entre des unités Rhap3 et IdopA respectivement des première et seconde séquences polysaccharidiques 15 précitées et selon le schéma réactionnel : COONa /O\ COONa OH + Cette souche est cultivée sur un milieu nutritif minimal minéral contenant : NaCl, 22 g ; Na2SO4, 3,7 g ; KCI, 0, 6 g ; KBr, 0,lg ; 20 MgCl2,6H20, 10 g ; CaCl2,2H20, 2,94 g ; NaHCO3, 0,16 g ; NaNO3, 25 mg ; NaH3PO4,12H20, 5 mg et H2O QSP 1L ; le pH étant alors de 7,2. De l'ulvane (2g/L) est ajoutée au milieu nutritif et il constitue alors la seule source de carbone. La souche apte à dégrader l'ulvane est isolée sur boite de pétri 25 contenant le même milieu nutritif additionné de gélose. Après incubation, on recueille des colonies qui se sont le plus développées. Sont bien évidemment retenues les souches qui métabolisent le substrat en le dégradant selon un mode de [3-élimination. 9 2917750 On décrira à présent, le mode de séparation du glucuronane et du substrat ulvane. Pour cela, à partir d'un extrait issu de l'extraction à chaud de polymères de l'ulve et après élimination des insolubles, le pH de l'extrait est abaissé à 2 en présence d'acide dilué. De la sorte, un précipité 5 P incluant des résidus d'acide glucuronique est obtenu et la solution S récupérée, est ramenée à un pH neutre voisin de 7. Cette solution S récupérée, est alors concentrée, purifiée par exemple par ultrafiltration, et ensuite lyophilisée ou précipitée à l'alcool. Ainsi, on obtient un polymère P2 incluant essentiellement des séquences d'acides aldobiuroniques, les io séquences de glucuronane restant sont celles intégrées au sein des séquences majoritaires. S'agissant du précipité P, contenant les résidus d'acide glucuronique, il peut être traité pour obtenir du glucuronane non substitué. Un tel polymère trouve des applications dans de nombreux secteurs 15 industriels. Avantageusement, le mélange de polymères P2 est utilisé comme substrat pour cultiver la souche d'Ochrobactrum PEC2 et induire la production de l'enzyme ulvane lyase , laquelle vient couper spécifiquement, par le procédé de [i-élimination, d'une part la liaison entre 20 le Rhap3S (le rhamnose 3 sulfate) et le GlcpA (l'acide glucuronique) de la première séquence d'acide aldobiuronique et correspondant à l'enchaînement [->4)-a-L-Rhap3 sulfate-(1 -4)-(i-D-GlcpA-(1-*]n et d'autre part, la liaison entre le Rhap3S (le rhamnose 3 sulfate) et le IdopA (l'acide iduronique) de la seconde séquence d'acide aldobiuronique 25 correspondant à l'enchaînement [->4)-a-L-Rhap3 sulfate-(1-4)-a-L-ldopA-(1 +]m. On décrira à présent, le mode de préparation de l'activité enzymatique. La souche d'Ochrobactrum tritici PEC2 est d'abord inoculée dans un 30 bioréacteur d'une capacité de 2 litres, rempli par 1,5 L de milieu minéral : NaCl 22 g ; Na2SO4 3,7 g ; KCI 0,6g ; KBr 0,l g ; MgCl2,7H2O 5 mg ; 10 2917750 NaNO3 25 mg ; NaH3PO4,12H2O, H2O QSP 1L, ajusté à pH 7,2 et additionné d'extrait de levure :1gIL, de peptone : 5g/L et de polymères d'ulvane soit préférentiellement de l'ulvane enrichie en acides aldobiuroniques (2g/L). 5 L'incubation est réalisée préférentiellement entre 25 et 35 C, par exemple 30 C, sous agitation pendant une durée moyenne de 48 heures. Pendant l'incubation, la concentration en ulvane lyase dans le milieu de culture de la souche Ochrobactrum tritici PEC2 s'est accrue, et par conséquent l'activité enzymatique du milieu de culture également. Ainsi, le io milieu de culture utilisé tel quel permet déjà d'obtenir la dégradation de l'ulvane en oligomères après que la bactérie ait été éliminée par filtration ou centrifugation. Avantageusement, les bactéries sont éliminées du milieu en centrifugeant le milieu de culture à 30 000 g pendant 30 min environ. 15 On concentre et on purifie l'ulvane lyase selon 3 niveaux de purification. Un premier niveau A de préparation de l'enzyme correspond au milieu de culture débarrassé des bactéries après incubation. Un second niveau de préparation B est obtenu en additionnant tout 20 d'abord du sulfate d'ammonium (60% p/v) au milieu de culture issu du premier niveau A de préparation pour précipiter les protéines qu'il contient. Les protéines incluent bien évidemment l'enzyme ulvane lyase. Ensuite, on procède à une centrifugation du milieu de culture précipité raison de 30 000g, pendant 30 minutes et on récupère le culot de 25 protéines. Enfin, le culot de protéines est réintroduit dans environ 10 ml d'une solution tampon Tris/HCI 20 mM à pH 7,5 . Un troisième niveau de purification C est obtenu en fractionnant par chromatographie sur résine échangeuse d'anions, par exemple sur colonne de DEAE-métacrylate, le fruit de la préparation du second niveau 30 B et en récupérant exclusivement la fraction correspondant à l'ulvane lyase. 11 2917750 S'agissant maintenant de l'activité des préparations enzymatiques elles sont mesurées par la valeur U (unité), laquelle correspond à la quantité d'extrait enzymatique qui entraîne l'apparition d'une micromole (pM) de molécules d'acide 4-déoxy-(hex-4-ène)pyranosyluronique par 5 minute, soit sensiblement 6.1017 molécules. L'apparition de ce dernier composé, est mesurée par spectroscopie UV à une longueur d'onde comprise entre 230 et 240 nm et plus précisément à 235 nm, laquelle permet de visualiser l'apparition de la double liaison. Aussi, la valeur d'une unité U correspond à 6.10" liaisons lo osidiques clivées. Par ailleurs, le coefficient d'extinction molaire E est de 5000 L/ Mole / cm, ce qui permet par application de la loi de Beer-Lambert, après mesure de l'absorption, de calculer les concentrations. L'activité spécifique correspond, elle, au nombre de pM de molécules d'acide 4-déoxy-(hex-4-ène)pyranosyluronique formées par 15 minute et par milligramme de protéines. On se reportera à la Figure 1, montrant le profil d'élution en chromatographie échangeuse d'anions sur colonne DEAE-metacrylate semi-préparative, des protéines présentes dans le milieu de culture de la souche Ochrobactrum tritici PEC2. L'éluant est du Tris-HCI 0,02 M, à 20 pH=8,5, et à gradient NaCl. Ainsi qu'on l'observe sur cette Figure 1, la courbe en traits continus représentant l'élution des différentes protéines issues du milieu de culture, précipitées au sulfate d'ammonium puis purifiées par chromatographie échangeuse d'anions, et la courbe en traits discontinus, l'activité enzymatique spécifique, on peut aisément recueillir 25 selon le troisième niveau de purification C précité, les enzymes spécifiques de l'activité ulvane lyase. Bien évidemment, le volume d'élution porté en abscisse correspond à un temps de traversée des protéines à travers la colonne, ce temps étant discriminant pour l'enzyme ulvane lyase ; tandis que l'activité spécifique est obtenue par mesure de la 30 absorbance à 235 nm, du produit de l'élution mis en contact avec un substrat ulvane. 12 2917750 Par ailleurs, on reportera dans le tableau ci-dessous, outre l'activité et les caractéristiques des protéines obtenues au troisième niveau C de préparation, celles des protéines obtenues selon les deux autres niveaux de purification A et B. Tableau niveaux de Protéines Activité Activité Rendement Facteur de purification totales totale spécifique % Purification (mg) U (U/mg) Milieu de culture 130 15,65 0,12 100 1 sans bactéries (A) Précipitation au 20,76 10,7 0,515 16 43 (NH4)2SO4 (B) Purification par 0,76 7,20 9,48 0,6 80 chromatographie (C) 10 On observera, que l'activité spécifique de la substance ou préparation enzymatique, issu du premier niveau A de préparation et contenant l'ensemble des protéines présentes dans le milieu de culture de la souche Ochrobactrum PEC.2, débarrassée des bactéries, est 15 sensiblement 100 fois moins importante que l'activité spécifique de la substance enzymatique incluant exclusivement l'ulvane lyase. Par ailleurs, on notera que le second niveau de purification B permet d'obtenir une activité spécifique près de cinq fois supérieure à l'activité spécifique du milieu d'incubation de la souche d'Ochrobactrum débarrassé seulement 20 des bactéries. 5 13 2917750 Aussi, il convient de calculer les coûts de purification du milieu de culture selon les trois niveaux, afin d'apprécier convenablement la productivité de dégradation des polysaccharides. Exemple 1 5 On illustrera dans cet exemple, en référence à la Figure 2, les mesures de vitesse de dégradation enzymatique. Une préparation enzymatique obtenue selon le troisième niveau de purification C (0,5 U) est appliquée sur 100mL d'une solution de substrat à 2 g/L, le substrat correspondant à de l'ulvane constitué essentiellement 10 d'acides aldobiuroniques. Ce substrat est en effet obtenu en le débarrassant des glucuronanes, selon le procédé décrit plus haut. La masse moléculaire moyenne de l'ulvane utilisé comme substrat est déterminée par chromatographie d'exclusion stérique couplée à un détecteur à diffusion de lumière en ligne avec un réfractomètre 15 (Technologie SEC-MALLS, pour Size Exclusion Chromatography Coupled to Multi-angle Laser-Light-Scattering , en langue anglaise) ; cette masse moyenne est de 6.105. L'expérience de dégradation est réalisée à 30 C pendant une durée totale de 8 heures, et ainsi que le montre la Figure 2, elle est suivie par 20 analyse de la masse moléculaire de l'ulvane par SEC-MALLS, au démarrage de l'expérience, t = 0 ; une demi-heure et une heure après, t = 30 minutes et t = 60 minutes ; deux heures après, t = 120 minutes ; quatre heures après, t = 240 minute ; six heures après, t = 360 minutes et enfin huit heures après, t = 480 minutes. 25 Au démarrage l'expérience, t = 0, la masse molaire moyenne de l'échantillon est donc de 6.105 g/mol et des fractions de faible masse molaire, sont mises en évidence notamment à partir de l'instant t = 120 min d'incubation. Cela révèle la dégradation du substrat par une activité endoglycosidase. 30 Après les 8 heures d'incubation, on ne détecte plus d'ulvane de masse élevée de 6.105 g/mol, correspondant au substrat initial. 14 2917750 L'évolution du profil chromatographique selon la technologie SECMALLS met en évidence la possibilité d'obtenir des fractions d'ulvane dont la masse moyenne dépendra de la durée d'incubation de l'enzyme en présence du substrat. Selon la durée d'incubation et la concentration en s enzyme additionnée en une seule fois au moment de la constitution du mélange réactionnel, on module le degré de polymérisation moyen des oligomères d'ulvane. Pour une incubation de 8 heures, les oligomères obtenus présentent un degré de polymérisation compris essentiellement entre 2 et 25. i0 Exemple 2 Selon un exemple 2, il est produit, conformément au procédé de clivage enzymatique selon l'invention, des oligomères d'un degré de polymérisation DP essentiellement équivalant à 2. On décrira tout d'abord 15 le mode d'obtention de ces oligomères, et ensuite on se reportera à la Figure 3, illustrant un profil d'élution et en dessous, un spectre de masse correspondant de ces oligomères. Après une incubation de 72 heures à 30 C d'une préparation de 100 ml constituée d'ulvane enrichi en acides aldobiuroniques à raison de 20 20g/L, et additionnée de la préparation enzymatique obtenue au troisième niveau de purification C (1 U d'extrait purifié C) en une seule fois au moment de la constitution du mélange, le mélange est chauffé à 100 C, par exemple pendant cinq minutes, pour inactiver l'enzyme. Ensuite, le produit est filtré sur filtre de porosité 0,2 pm pour éliminer les protéines 25 dénaturées. On additionne alors de l'isopropanol (2v) à la préparation pour faire précipiter les composés saccharidiques dont le poids moléculaire est supérieur à 2 000 Da (g/mol) et qui n'auraient pas été dégradés par l'enzyme. Les composés précipités sont récupérés après centrifugation, par exemple à 30 000g pendant 30 minutes, puis ils sont 30 lyophilisés. Le surnageant est soumis à une évaporation pour éliminer l'isopropanol et concentrer l'échantillon qui est lyophilisé à son tour. 15 2917750 Le rendement de la dégradation est obtenu après mesure de la masse des produits présents dans le précipité et dans le surnageant. Dans cet exemple 2, on récupère dans le surnageant 65% d'oligomères d'ulvane de petit degré de polymérisation ; 35% de l'ulvane de départ 5 n'ayant pas été dégradé en petites molécules. L'analyse du produit résultant de la dégradation par chromatographie d'exclusion stérique sur Biogel P2 (détection par réfractométrie) met en évidence une dégradation de 65% du substrat initial en petites molécules. Ainsi que le montre la Figure 3, la fraction majoritaire éluée entre 310 et 380 ml, vers 360 ml est io analysée par spectrométrie de masse de type ESI-QITOF (pour électrospray-quadrupôle-temps de vol). Les résultats montrent que 80 % des oligomères provenant de la dégradation de l'ulvane présente un degré de polymérisation DP égal à 2, la masse de l'ion étant de 401,1, alors que 20 % des oligomères présente un degré depolymérisation DP 15 égal à 4, la masse de l'ion étant de 824,8. Exemple 3 Selon un exemple 3, il est produit des oligomères d'un degré de polymérisation DP essentiellement supérieur à 2. Pour ce faire, l'incubation de l'enzyme (préparation C, 1 U) en 20 présence de 100 ml du substrat ulvane enrichi en acides aldobiuroniques à raison de 20 g/L, est ici ramenée à 36 heures. L'élution sur une colonne Biogel P6 met alors en évidence la présence d'oligomères, élués entre 60 et 170 ml, ainsi que l'illustre le profil d'élution représenté sur la Figure 4. On distingue plus précisément 25 des oligomères de petite taille ou d'un plus petit degré de polymérisation DP, élués plus tardivement entre 150 et 170 ml , et aussi des oligomères de plus grande taille d'un degré de polymérisation supérieure à 4, et élués entre 60 et 140 ml. Ainsi, il est mis en évidence ici, la possibilité d'obtenir des oligomères d'ulvane de la taille que l'on souhaite en modulant 30 notamment les paramètres de temps d'incubation et de quantité de substance enzymatique. 16 2917750 Bien entendu, ces résultats obtenus sur des quantités modestes de matières premières, que ce soient de substance enzymatique ou bien de substrat ulvane, peuvent aisément être transposés à des quantités industrielles, dans le but de produire les oligomères désirés à des coûts 5 avantageux. 17 REVENDICATIONS , 1. Procédé de clivage enzymatique de polysaccharides comprenant une première séquence [-g)-l3-o-GIcpA-(1-4)-a-L-Rhap3 sulfate-(1->]n et une seconde séquence [-*4)-a-L-IdopA-(1->4)-a-L-Rhap3 sulfate-(1->]m, la première et la seconde séquences étant respectivement constituées de deux unités oses reliées par une liaison osidique, ledit procédé étant du type selon lequel : - on fournit lesdites séquences de polysaccharide ; io - on fournit un micro-organisme apte à produire une substance enzymatique de la classe des lyases ; et, - on met en contact ladite substance enzymatique avec lesdites séquences de polysaccharide de manière à provoquer le clivage de la liaison osidique selon une réaction de (3 élimination, suivant le mécanisme 15 schématique : caractérisé en ce qu'on choisit un micro-organisme appartenant aux bactéries du genre Ochrobactrum pour produire ladite substance enzymatique. 20 2. Procédé de clivage enzymatique selon la revendication 1, caractérisé en ce que la souche bactérienne choisie appartient à l'espèce Ochrobactrum tritici. 3. Procédé de clivage enzymatique selon la revendication 1 ou 2, caractérisé en ce qu'on incube lesdites bactéries avec un substrat 25 polysaccharidique de manière à produire ladite substance enzymatique, et en ce qu'on isole les bactéries incubées de ladite substance enzymatique. COONa OH H3C ~O SO3Na O OH 18 2917750 4. Procédé de clivage enzymatique selon la revendication 3, caractérisé en ce que ladite substance enzymatique est purifiée pour en retenir l'enzyme spécifique du clivage de la liaison osidique. 5. Procédé de clivage enzymatique selon l'une quelconque des 5 revendications 1 à 4, caractérisé en ce que la substance enzymatique provoque le clivage d'un nombre de liaisons osidiques desdites séquences de polysaccharide compris entre 6.1016 et 6.1020 par minute et par milligramme de ladite substance enzymatique. 6. Procédé de clivage enzymatique selon l'une quelconque des revendications 1 à 5, caractérisé en ce qu'on extrait lesdites séquences de polysaccharides à partir d'une algue du genre Ulva. 7. Procédé de clivage enzymatique selon la revendication 6, caractérisé en ce que, lesdits polysaccharides comprenant en outre des séquences incluant le glucuronane, on élimine ladite séquence incluant le glucuronane, desdites première et seconde séquences [->4)-13-o-GlcpA-(1-*4)-a-L-Rhap3 sulfate-(1--]n, [->4)-a-L-IdopA-(1->4)-a-L-Rhap3 sulfate- (1 -->]m. 8. Procédé de clivage enzymatique selon la revendication 6 ou 7, caractérisé en ce que, lesdits polysaccharides comprennent en outre des héparanes incluant des polymères constitués de [-*4)-3-o-GlcpA-2-sulfate-(1->4)-a-o-GIcNsulfo-6-sulfate-(1-]X et/ou de [->4)-a-L-IdopA-2-sulfate (1->4)-a- o-GlcNsulfo-6-sulfate -(1 --]y. 9. Substance enzymatique adaptée au procédé de clivage enzymatique selon l'une quelconque des revendications 1 à 8, caractérisé en ce qu'elle est obtenue à partir d'un micro-organisme appartenant aux bactéries du genre Ochrobactrum. 10. Substance enzymatique selon la revendication 9, caractérisée en ce que la souche bactérienne appartient à l'espèce Ochrobactrum tritici. 11. Substance enzymatique selon la revendication 10, caractérisée en ce que la souche bactérienne est la souche Ochrobactrum tritici CNCM 1-3776. 19 2917750 12. Polysaccharides clivés obtenus par un procédé de clivage enzymatique selon l'une quelconque des revendications 1 à 8.