Brevet FR2914303A1 — publié le 20081003

L'invention concerne de nouveaux composés de diagnostique de maladies liées à l'apoptose, leur procédé de préparation et leur utilisation en imagerie médicale. L'apoptose, ou mort cellulaire programmée, fait référence aux mécanismes qui aboutissent au suicide des cellules eucaryotes en réponse à certains stimuli. Ce phénomène physiologique assure l'équilibre entre les cellules qui prolifèrent et celles qui doivent être naturellement éliminées. En situation pathologique, il peut être accru et avoir des conséquences dévastatrices sur le plan fonctionnel dans certains tissus. Le rôle de l'apoptose a été largement démontré dans les maladies neurodégénératives chroniques (maladie d'Alzheimer, maladie de Parkinson), dans les maladies ischémiques (infarctus du myocarde, ischémie cérébrale) et dans les pathologies inflammatoires (athérosclérose, arthrite). Inversement, l'apoptose peut jouer un rôle bénéfique lorsqu'elle conduit à la mort des cellules tumorales lors des traitements par radiothérapie ou par chimiothérapie. La détection de l'apoptose en imagerie constitue un nouvel outil diagnostique très utile pour aider les cliniciens à apprécier la sévérité d'une pathologie, à prédire le risque de survenue d'événement grave et à suivre l'efficacité des traitements grâce à une caractérisation fine des lésions. La détection de l'apoptose in vivo est difficile en raison notamment du fait que le phénomène n'est pas toujours exprimé, et qu'il est relativement bref puisqu'il se déroule sur une période de 6 à 24 heures maximum, après quoi les débris cellulaires sont éliminés par les cellules phagocytaires. L'art antérieur décrit plusieurs tentatives de mise au point d'agents de contraste destinés à cibler des cellules apoptotiques Ces agents comprennent typiquement une partie de ciblage appelée biovecteur, destinée à la reconnaissance spécifique de la cible biologique associée au mécanisme d'apoptose, et une partie de signal capable d'être détectée par les méthodes d'imagerie : imagerie optique, scintigraphie, imagerie par résonance magnétique (IRM). La partie de signal est par exemple un chélate de métal paramagnétique tel que le Gadolinium, linéaire ou macrocyclique, notamment DTPA, DTPA BMA, DTPA BOPTA, DO3A, DOTA. Concernant la partie de ciblage, la particularité des cellules apoptotiques à exposer la phosphatidylsérine (PS) sur le feuillet externe de la membrane plasmique (alors qu'elle est normalement confinée sur le feuillet interne) a conduit à chercher des biovecteurs ciblant la PS. L'externalisation de la PS survient précocement et peut donc jouer un rôle de marqueur du processus apoptotique. Plusieurs protéines possèdent une forte affinité et une grande spécificité pour la PS. C'est en particulier de l'annexine V. Il s'agit d'une protéine endogène de 35 kDa de poids moléculaire, présente au niveau intra ou extra cellulaire. Elle a été couplée à différents groupes rapporteurs selon les modalités d'imagerie retenues. En particulier, elle a été conjuguée à des particules d'oxyde de fer superparamagnétiques (Schellenberger EA. et al., Mol. Imaging, 2002, 1:102-107). In vitro, cet agent de contraste a permis d'obtenir une image en IRM dans des cellules Jurkat rendues apoptotiques après traitement par la camptothécine. Actuellement, la modalité de détection de l'apoptose in vivo la plus utilisée est la scintigraphie à l'aide d'annexine V couplée au 99mTc. Dans un modèle d'athérosclérose chez le lapin soumis à une désendothélialisation de l'aorte abdominale et à un régime riche en cholestérol, le marqueur s'est accumulé massivement dans les lésions (Kolodgie FD. et al., Circulation, 2003, 108:3134-3139). On recherche toujours une amélioration de la qualité du diagnostic in vivo à l'aide de nouveaux marqueurs très spécifiques, destinés aux modalités d'imagerie connues de l'homme du métier, notamment l'IRM, les rayons X, la scintigraphie aux rayons gamma, le scanner CT, les ultrasons, le PET, l'imagerie optique. On rappelle que dans le cas de l'IRM, un contraste est obtenu grâce à l'administration d'agents de contraste contenant des métaux paramagnétiques ou des composés superparamagnétiques qui ont un effet sur la relaxivité des protons de l'eau. Dans le cas de la scintigraphie, le contraste est obtenu par la localisation spécifique d'un composé radiopharmaceutique émettant des rayons gamma ou beta. On cherche des composés dont la synthèse chimique n'est pas trop complexe, suffisamment stables in vivo pour une utilisation en imagerie médicale, et dont le prix de revient n'est pas trop élevé et donc en particulier des composés ne comprenant pas de biovecteur protéique telle que l'annexine, notamment pour l'IRM. On cherche aussi pour l'oncologie des produits permettant une imagerie des signes précoces d'apoptose afin notamment d'aider à sélectionner les traitements de chimiothérapie les plus efficaces. L'activité des drogues anti-hormonales, antiangiogéniques et la radiothérapie dépendent principalement de l'apoptose des cellules tumorales, c'est pourquoi le suivi en imagerie de ce phénomène apportera des informations critiques pour la prise en charge des patients. Dans les maladies ischémiques cérébrales ou cardiaques, l'apoptose survient généralement 24 à 48 heures après l'accident initial. Des médicaments anti-apoptotiques, agissant par exemple sur la voie des caspases, seraient certainement utiles s'ils pouvaient être associés à une méthode d'imagerie. Il en est de même pour l'utilisation de drogues immunosuppressives dans les cas de rejet de greffe d'organe. Il existe donc de nombreuses indications pour un agent de contraste capable de détecter efficacement les cellules apoptotiques in vivo. Le demandeur a réussi à obtenir des composés comprenant une partie de ciblage de zones d'apoptose, efficaces non seulement in vitro mais aussi et surtout en IRM in vivo. De tels composés sont en effet difficiles à obtenir car il faut non seulement identifier un biovecteur efficace in vitro, mais obtenir un composé efficace en imagerie de diagnostique clinique humaine. C'est particulièrement le cas pour l'IRM qui est reconnue pour être une technique très demandée car sans radioactivité, mais dont la sensibilité est très nettement inférieure à celle de la médecine nucléaire. Le composé obtenu doit à la fois avoir une affinité suffisante pour reconnaître sa cible, une forte spécificité pour être un indicateur distinctif de l'état pathologique, une stabilité appropriée pour ne pas être dégradé ou modifié in vivo ; et en plus sans que la partie de signal n'interfère de manière gênante sur ces différents paramètres (par exemple sans altérer l'affinité et la stabilité du ligand). Dans la présente demande on utilise le tableau de correspondance suivant. Alanine A Ala Arginine R Arg Asparagine N Asn Aspartate D Asp Cystéine C Cys Glutamate E Glu Glutamine Q Gln Glycine G Gly Histidine H His Isoleucine I Ile Leucine L Leu Lysine K Lys Méthionine M Met Phénylalanine F Phe Proline P Pro Sérine S Ser Thréonine T Thr Tryptophane W Trp Tyrosine Y Tyr Valine V Val Après de nombreuses tentatives, le demandeur a réussi à obtenir des composés efficaces in vivo. L'invention concerne ainsi un composé de formule générale (I) suivante : Signal û Lien û Peptide (I) dans laquelle Signal représente une entité signal ; Lien, présent ou non, représente une liaison chimique et Peptide représente un peptide comprenant un peptide ciblant l'apoptose, le peptide ciblant l'apoptose étant choisi parmi les peptides de formule suivante et leurs équivalents fonctionnels: - Xl-X2-X3-X4-X5-X6 (1) (SEQ ID No 1) dans laquelle Xl et X2 représentent indépendamment l'un de l'autre la leucine ou l'isoleucine, X3 et X4 représentent la lysine, X5 représente la proline et X6 représente la phénylalanine, avantageusement le peptide L-I-K-K-P-F (SEQ ID No 11) et ses équivalents fonctionnels. - D-A-H-S-X7-S (2) (SEQ ID No 2) dans laquelle X7 représente la phénylalanine ou la leucine ; -P-G-D-L-X8-X9 (3) (SEQ ID No 3) dans laquelle X8 représente la sérine ou la valine et X9 représente la thréonine ou l' arginine ; - H-G-X10-L-SX11 (4) (SEQ ID No 4) 4 dans laquelle X10 représente l'acide aspartique ou l'histidine, et X11 représente la thréonine ou l'isoleucine ; -V-L-G-E-RG (5) (SEQ ID No 5) ; et les sels pharmaceutiquement acceptables de ces composés. Le demandeur a en effet démontré l'affinité des peptides de formule (1) à (5) pour la PS comme cela sera décrit plus loin. L'expression peptide ciblant l'apoptose est également désignée PEPTIDE P dans la demande. Avantageusement Peptide représente un PEPTIDE P. Par l'expression LIKKPF (SEQ ID No 11) et ses équivalents fonctionnels définis on entend le peptide LIKKPF (SEQ ID No 11) dont le demandeur a démontré l'efficacité et les peptides dérivés de formule (1) Xl-X2-X3-X4-X5-X6 (SEQ ID No 1), qui présentent une efficacité en imagerie semblable ou meilleure que le LIKKPF (SEQ ID No 11) (ce qui inclut les peptido-mimétiques), cette efficacité étant testée à l'aide de tests et de modèles in vivo décrits en détail dans la demande ou de modèles analogues appropriés. On citera parmi ces peptides les peptides dérivés Xl-X2-X3-X4-X5-X6 (SEQ ID No 6) suivants, à la condition qu'ils présentent une efficacité en imagerie semblable ou meilleure que le LIKKPF (SEQ ID No 11) : - Xl est la leucine L ou un autre aminoacide hydrophobe alkyle substitué (isoleucine, alanine, valine), - X2 est l'isoleucine I ou un autre aminoacide hydrophobe alkyle substitué (leucine, alanine, valine), -X3 et X4 sont la lysine K ou un autre aminoacide comprenant une fonction basique (arginine, histidine, ornithine), mais préférentiellement la lysine qui est très avantageuse pour l'interaction du peptide avec sa cible - X5 est la proline P - X6 est la phénylalanine F ou un autre acide aminé aromatique hydrophobe (par exemple le tryptophane, la tyrosine, l'histidine, la biphénylalanine, la naphthylalanine) De même pour les autres peptides de formules (2) à (5), les équivalents fonctionnels sont des peptides analogues ou dérivés qui présentent une efficacité en imagerie semblable ou meilleure que celle du peptide considéré de formule (2) à (5). 25 30 L'invention concerne aussi les composés de formule (I) fonctionnellement équivalents au composé de formule (I), c'est-à-dire ayant une activité in vitro et in vivo comparable à ces composés, l'affinité et la spécificité des peptides équivalents au Peptide du composé (I) étant évaluée par des méthodes de screening appropriées, telles que celle décrite dans la description détaillée. On entend par peptide comprenant au moins un peptide ciblant l'apoptose (PEPTIDE P), un peptide présentant la séquence peptidique de reconnaissance de la cible biologique du PEPTIDE P, éventuellement flanquée en extrémité N et/ou C terminal d'un groupe chimique n'interférant pas sur cette séquence. Dans la présente demande, on désigne le peptide ciblant l'apoptose et ses dérivés par PEPTIDE P . On entend par entité Signal une entité chimique permettant d'obtenir un signal en imagerie médicale, en particulier : un chélate capable d'être couplé à un métal paramagnétique une nanoparticule métallique, notamment une nanoparticule superparamagnétique d'oxide de fer une nanoparticule lipidique, avantageusement sous forme d'émulsion, cette nanoparticule étant porteuse d'au moins un chélate capable d'être couplé à un métal paramagnétique (dans ce cas, le PEPTIDE P est greffé à la nanoparticule lipidique en émulsion qui est elle-même porteuse de chélates ; la liaison du peptide à la nanoparticule lipidique se fait par exemple par un groupe de liaison chimique). Selon un mode de réalisation, l'entité signal comprend au moins un chélate Ch (sous forme complexant un métal M). Avantageusement le chélate est couplé au métal M. Avantageusement, le métal M est un ion de métal paramagnétique, ou un radionucléide. Le complexe formé par le chélate et le métal M est stable dans les conditions physiologiques de manière à éviter une libération non souhaitée du métal M dans l'organisme. Avantageusement le chélate ou l'entité signal comprend au moins un groupe fonctionnel permettant de relier l'entité signal avec le Lien ou directement avec le Peptide. L'invention concerne aussi les composés de formule (I) dans lesquels le chélate n'est pas complexé avec le métal. Avantageusement, Ch est un chélate linéaire choisi parmi : EDTA, DTPA diéthylènetriaminopentaacétique acide, N[2-[bis(carboxyméthyl)amino] -3 -(4-ethoxyphenyl)propyl] -N[2-[bis(carboxyméthyl)amino] éthyle] -L-glycine (EOB-DTPA), , des dérivés mono- ou bis-amide du DTPA, tels que N,N-bis[2-[carboxyméthyl[(méthylcarbamoyl)méthyle]amino]éthyle] glycine (DTPA-BMA), 4-carb oxy-5, 8, 1 1 -tris(carb oxyméthyl) - 1 -phenyl-2oxa-5, 8, 1 1 -triazatridec an- 1 3 - oic acide (BOPTA). De façon avantageuse, Ch est un chélate macrocyclique choisi parmi 1,4,7,10-tetraazacyclododecan-1,4,7,10-tetraacetic acide (DOTA), 1,4,7,10-tetraazacyclododecan-1,4,7-triacetic acide (DO3A), 10-(2-hydroxypropyl)-1,4,7,10-tetraazacyclododecan-1,4,7-triacetic acide (HPDO3A) 2-methyl-1,4,7,10-tetraazacyclododecan-1,4,7,10-tetraacetic acide (MCTA), ( alpha , alpha ', alpha ", alpha "')-tetramethyl-1,4,7,10-tetraazacyclododecan- 1,4,7,10-tetraacetic acide (DOTMA), 3,6,9,15-tetraazabicyclo[9.3.1]pentadeca-1(15),11,13-triene-3,6, 9-triacetic acide (PCTA), 1,4,7-triazacyclononane N,N',N44-triacétique acide (NOTA), AAZTA (décrit notamment dans WO 2006/00273 formule III page 120 et US 2006/00118830 page 2 et 89), TETA, TETMA, PDTA, et leurs dérivés benzo, LICAM, MECAM, HOPO (DE 102004062258). Ch peut également être un dérivé de ces composés dans lesquels un ou plusieurs groupes carboxyliques sont sous forme d'un sel, ester, amide correspondant ; ou un composé correspondant dans lequel un ou plusieurs groupes carboxyliques sont remplacés par un groupe phosphonique et/ou phosphinique. On peut aussi utiliser un chélate choisi parmi : DOTA gadofluorines, DO3A, HPDO3A, TETA, TRITA, HETA, DOTA-NHS, M4DOTA, M4DO3A, PCTA et leurs dérivés, avantageusement choisi parmi. DOTA, DTPA, DO3A, HPDO3A, TRITA, TETA, BOPTA, NOTA, PCTA, DOTMA, AAZTA, HOPO et leurs dérivés. De manière plus large, le ou les chélates formant l'entité signal pourront répondre à la formule du document WO01/60416 suivante : A3 E' 2 E3 \Es E\Ae~E\As~E~\A4A~ ENA? EA'~EA E'A7 ~Es ~Fs .,3 A' A5 As A5 E5 \ 1,Ei ùAs \A2/ EL A E A 8, / \ 3 /Es F \ A7 On pourra utiliser en particulier les composés DTPA, DOTA, NOTA, DO3A, et dérivés. On citera aussi les chélates rappelés dans W003/011115 notamment de formules suivantes: 1P Y O0 e N X X~O O~N~0 (); O r-('N & N/--1 Y Y~R~NAIEN I~ V R K V -1 \\ O x O X --Nç I XO~!ùI -'N'--1 N c y- 'LN cN /ùN J ,SIN N~ X avec X un groupe capable de coordiner un cation métallique, de préférence O-, OH, NH2, OP03-, NHR avec R une chaîne aliphatique, Y un lien chimique. On pourra en particulier utiliser les chélates désignés P730 du demandeur décrits dans EP 661 279 (US 5 919 432) de formule et les chélates à squelette PCTA décrits par le demandeur notamment dans US 6 440 956, que ces chélates ou leurs intermédiaires soient porteurs ou non de chaînes hydrophiles, et en particulier de chaînes aminoalcool courtes ou longues. ,and R5 R2 /D~ F Ki, K1 R3\ K11~ CHùN v NùCH X~ KK3\X1 K5 K, K6 4 R2 x2 X4 K19 K20 R1 R4 \\ X K18 r N(Iv)N~ 1 I K13 K17 -N N I _ -K14 R3 K16K15 X 2 K18 Ki7- N N K14 ( R3K Ki 2 16 5 K16 K~ KÇ3 )14 N N N K2 ,R1 X3 K19~ (K~ X1 N N K13 X2 R2 avec Xl à X4 et K1 à K16 des chélates ci-dessus représentant H ou une chaîne en C1- C20, et R1, R2, R3, R4, R5 représentant indépendamment -000H, -P(0)(OH)2; et étant choisis de façon à ce que le chélate comprenne au moins une fonction capable d'être couplée à un PEPTIDE P directement ou par l'intermédiaire du Lien. On citera aussi les chélates du document US2006/0018830 page 9 à 11 de la partie description [0150] à [0158]. Avantageusement dans le cadre de la présente invention, Ch est le DTPA ou le DOTA ou leurs dérivés. Dans le cas de l'IRM, la relaxivité ri de ces chélates est typiquement de l'ordre de 4 à 20 s_i mMol-1 Gd-1 à un champ de 0,5 à 1,5 T. On rappelle que la relaxivité longitudinale ri d'un produit de contraste paramagnétique donne la mesure de son efficacité magnétique et permet d'apprécier son influence sur le signal enregistré. En imagerie médicale IRM, les produits de contraste modifient le temps de relaxation des protons, et l'augmentation de la relaxivité obtenue permet d'obtenir un signal plus élevé. On entend par groupe de liaison ou Lien L un groupe chimique : permettant de relier le SIGNAL et le ou les PEPTIDE P n'ayant pas lui- même la fonction d'entité signal qui est assurée par le Signal n'ayant pas lui-même la fonction de ciblage qui est assurée par le PEPTIDE P Le couplage de chélates avec des biovecteurs en particulier peptidiques est décrit dans l'art antérieur, et fait généralement intervenir une liaison chimique (Lien) telle que décrite dans le document WO01/60416. La structure et la nature chimique de la liaison chimique sont définies pour permettre le couplage chimique entre la partie peptidique du PEPTIDE P et le ou les chélates utilisés, et de manière à obtenir une affinité de la partie PEPTIDE P pour sa cible et une spécificité de la reconnaissance appropriée pour l'utilisation. Un grand nombre de Lien peuvent être utilisés, dans la mesure où ils sont capables d'interagir avec au moins un groupe fonctionnel de biovecteur et au moins un groupe fonctionnel de chélate. Avantageusement Lien représente : a) un groupe de formule Q1 ù 1 ù Q2, dans laquelle Q1 et Q2 identiques ou différents représentent O, S, NH, CO2, - NHCO, CONH, NHCONH, NHCSNH, SO2NH- ou NHSO2-, et 1 représente un groupe alkyle (avantageusement en CI-Cio), alcoxyalkyle (avantageusement en CI-Cio), alcényle (avantageusement en C2-C6), alcynyle (avantageusement en C2-C6), polyalkoxyalkylène, alkyle interrompu par un ou plusieurs squarate, par un ou plusieurs aryles, avantageusement phényle, ou par un ou plusieurs groupes choisis parmi -NH-, -0-, -CO-, -NH(CO)-, -(CO)NH-, - O(CO)-, ou -(OC)0- ; b) un groupe (CH2),,, (CH2)ri CO-, -(CH2)äNH-CO- avec n = 2 à 10 , (CH2CH2O)q(CH2)r CO- , (CH2CH2O)q(CH2)rNH-CO- avec q = 1-10 et r=2-10, (CH2)n-CONHù , (CH2)ri CONHùPEG, (CH2)ri NH-, (CH2)n (CH2)n\ NN PEG _ (CH2)n H H avec n=1 à 5 et avantageusement n=4 ou 5, 25 HOOC-CH2-O-(CH2)2-O-(CH2)2-O-CH2-000H ; HOOC-(CH2)2-CO2-(CH2)2-OCO-(CH2)2-COOH ; HOOC-CH(OH)-CH(OH)-COOH; HOOC-(CH2)ri COOH; NHz-(CHz)ä-NHz, avec n=1-20; NHz-(CH2)ri CO2H ; NH2-CH2-(CH2-O-CH2)n CO2H avec n=1 à 10. Parmi les linkers avantageux, on citera en particulier ceux des exemples de la présente demande : CH2 -phényle - NHCSNH - (CH2O) r-i à 3 (CH2)n N H (CH2)m avec n=1 à 5 et m = 0 à 5 N H (CH2)n \ PEG - (CH2)n N N H H (CH2)n - CO avec n= 1 à 5 avec n=1 à 5 et m= 0 à 5 (CH2)3 - squarate - (CH2CH2O)2(CH2)-CO c) des liens décrits dans le brevet US 6 264 914, capables de réagir avec les groupes fonctionnels (du biovecteur et du chélate) amino, hydroxyle, sulfhydryle, carboxyle, carbonyle, carbohydrates, thioéthers, 2-aminoalcohols, 2-aminothiols, guanidinyle, imidazolyle, phénolique ; selon les définitions de ce document. d) certains liens décrits dans le brevet US 6 537 520 de formule - (Cr6r7)g (W)h-(Cr6ar7a)g,-(Z)k-(W)h'-(Cr8r9)g"-(W)h"-(Cr8ar9a)g avec g+h+g'+k+h'+g"+h"+g"' différent de 0; avec les définitions identiques à celles de ce document colonne 8. e) certains liens décrits dans le document WO 02/085908 (avec les définitions identiques à celles de ce document), par exemple une chaîne linéaire ou ramifiée de liaison organique choisie parmi : - CR6"'R7"'-, - (R6"')C=C(R7"')=, -CC-, -C(0)-, -0-, -S-, -SO2-, -N(R3"')-, - (R6"')C=N-, -C(S)-, -P(O0(OR3"')-, -P(0)-(OR3"')O-, avec R"3 un groupe 25 capable de réagir avec un azote ou un oxygène - une région cyclique (cycloalkyles divalents, hétérocycles divalents) - des polyalkylènes, polyalkylènes glycols f) des liens du document W003/011115 pages 124-125 30 g) des liens du document US 2006/0018830 (le Lien du demandeur correspondant au lien désigné N-O-P dans ce document US 2006/0018830) - liens comprenant au moins un acide aminé non alpha (page 12 à 15, tableau 1 de ce document) -liens comprenant au moins un acide aminé non alpha porteur d'un groupe cyclique (page 18 à 25, tableau 3 de ce document) - liens ne comprenant pas d'acide aminé - autres liens (page 27, 28 de ce document) Le choix de Lien (structure et taille) pourra se faire notamment de manière à contrôler notamment la charge, la lipophilie, l'hydrophilie du produit de formule (I), pour optimiser le ciblage biologique, la biodistribution. On pourra en particulier utiliser des liens biodégradables in vivo, des liens PEG ou mini-PEG. Le choix du lien est effectué de manière à ne pas altérer de manière gênante l'efficacité du composé de formule (I) selon l'invention, un test permettant de vérifier cette efficacité in vitro et in vivo étant présentés dans la description détaillée. Selon un autre mode de réalisation, Signal représente un marqueur pour imagerie optique (molécule fluorescente utilisée en imagerie optique). Parmi les marqueurs pour imagerie optique on citera notamment ceux de US2006/0018830 et notamment ceux cités page 11 et 12 paragraphe 1.B, avec des modalités précises d'imagerie décrites colonne 33 ([0259]) au paragraphe 6 (techniques et chromophores et fluorophores décrits en détail). Selon un autre mode de réalisation, Signal représente des quantum dots (fluorophores inorganiques comprenant des nanocristaux). Selon un autre mode de réalisation, Signal représente une nanoparticule superparamagnétique revêtue d'une couche organique, avantageusement communément désignée SPIO ou USPIO ( ultra small particles of iron oxide ). Avantageusement, la nanoparticule comporte un noyau d'oxyde ou d'hydroxyde de fer, notamment de magnétite (Fe304), maghémite (y-Fe203). On utilisera avantageusement une nanoparticule recouverte d'un revêtement bisphosphonate, avantageusement gem-bisphosphonate, décrite dans W02004058275, la particule et la méthode de couplage entre le peptide et la nanoparticule étant détaillées dans les exemples de la présente demande. Les nanoparticules magnétiques utilisées sont des nanoparticules acides à base d'un composé du fer, et recouvertes par une couche comprenant un ou plusieurs composés gembisphosphonates identiques ou différents, la couche de recouvrement de la nanoparticule ayant la formule (C) suivante : T-L2-CH(P03H2)2 (C) dans laquelle : • Le lien L2 représente un groupement organique reliant la fonction T à la fonction gembisphosphonate ûCH(P03H2)2 ; • T représente une fonction chimique couplé au PEPTIDE P ou au Lien de la présente demande. Dans un mode de réalisation particulier T-L2 représente le Lien du composé de formule (I). La composition se présente sous forme d'une solution aqueuse stable de nanoparticules. Dans ces compositions, le taux de complexation (de la couche avec le peptide) du composé (C) sur les particules est supérieur à 50%, avantageusement à 70%, et de préférence supérieur à 80, 90, 95%. On préfère particulièrement que les particules magnétiques acides (p) soient complexées sur au moins 90% de leurs sites protonés par des composés de formule (C). Selon une variante, une partie des fonctions T de la couche est couplée à un PEPTIDE P, et une partie des fonctions T est couplée à un composé hydrophile notamment un composé porteur de groupes hydroxyle et notamment un composé hydrophile aminoalcool désigné AAGIAA28 décrit dans W02004058275 (exemple 8) ou un groupe PEG. Les particules magnétiques (p) possèdent un diamètre hydrodynamique compris entre 5 et 300 nm, de préférence entre 5 et 60 nm, encore de préférence entre 5 et 30 nm. Le linker L2 permet de relier et/ou d'espacer la fonction gem-bisphosphonate et l'entité réactive T capable d'assurer le greffage covalent du PEPTIDE P (le biovecteur) sur la nanoparticule, par l'intermédiaire ou non du Lien.. A titre préféré, le lien L2 représente un groupement divalent. De préférence, le lien L2 est choisi parmi : un groupe aliphatique ; alicyclique ; alicyclique aliphatique ; aromatique ; aromatique aliphatique, lesdits groupes aliphatiques, alicycliques et aromatiques pouvant être éventuellement substitués par un groupe méthyle, hydroxy, méthoxy, acétoxy, amido, ou un atome d'halogène, avantageusement un atome de chlore, d'iode ou de brome ; - un groupement -11-NHCO-12 où 11 et 12, identiques ou différents, représentent un groupe aliphatique ; alicyclique ; aromatique ; alicyclique aliphatique ou aromatique aliphatique, lesdits groupes pouvant être éventuellement substitués par un groupe méthyle, hydroxy, méthoxy, acétoxy, amido ou un atome de chlore, d'iode ou de brome. Selon des réalisations préférées, L2 représente un groupe aliphatique substitué ou non, et plus préférentiellement un groupe û(CH2)p û, où p est un entier de 1 à 5, ou préférentiellement un groupe û(CH2)ä-NHCO-(CH2)m où n et m représentent un nombre entier de 0 à 5. A titre de groupes T préférés, on peut citer notamment les groupes COOH, -NH2, -NCS, - NH-NH2, -CHO, alkylpyrocarbonyle (-CO-O-CO-alk), acylazidyle (-CO-N3), iminocarbonate (-O-C(NH)-NH2), vinylsulfuryle (-S-CH=CH2), pyridyldisulfuryle, (-S-SPy), haloacétyle, maléimidyle, dichlorotriazinyle, halogène, les groupes -COOH et ûNH2 étant particulièrement préférés. De préférence, T représente un groupe ûCOOH ou ûNH2 et L2 un groupe aliphatique substitué ou non, avantageusement un groupe û(CH2)pû, où p est un entier de 1 à 5. On préfère tout particulièrement la couche de formule (Cl) suivante HOOC-(CH2)2-CH(P03H2)2 Plusieurs composés de type nanoparticules d'oxyde de fer porteurs de PEPTIDE P sont décrits dans la description détaillée. Selon un autre mode de réalisation, Signal représente une nanoparticule lipidique comprenant au moins un chélate. Les nanoparticules lipidiques peuvent se trouver sous la forme d'émulsion nanoparticulaire, contenant ou non des perfluorocarbones, telle que celles décrites dans les documents WO 03/062198, US 5 958 371, US 5 080 885, US 6 403 056. Les nanoparticules lipidiques peuvent être mises en suspension dans un milieu aqueux ou hydrophile. Ces nanoparticules ont un diamètre de l'ordre de 10 nm à 500 nm, notamment 20 à 250 nm. Les nanoparticules en émulsion peuvent comprendre ou être couplées avec un grand nombre de chélates, par exemple 10 000 à 100 000 chélates par nanoparticule. Les émulsions comprennent suffisamment de composés de formule (I) et donc de Peptide pour permettre la reconnaissance de la zone d'apoptose. On citera comme nanoparticules possibles des liposomes, unilamellaires ou multilamellaires, des micelles, des microgels, des gouttelettes d'huiles, des lipoprotéines, tels que HDL, LDL, IDL, VLDL, chylomicrons, des nanoparticules de fluorocarbone, des nanobulles, ou analogues dont la surface est lipophile. Avantageusement le chélate est lipophile et attaché à la membrane de la nanoparticule. De façon avantageuse le Lien du composé de formule (I) est suffisamment lipophile pour coupler le Peptide à la membrane de la nanoparticule lipidique, le PEPTIDE P étant suffisamment exprimé à la partie externe de la nanoparticule pour la reconnaissance spécifique de la cible apoptotique. Le Lien est par exemple un groupe lipophile tel qu'une chaîne alkylène en C10-C20, cette chaîne s'insérant dans la couche lipidique de la nanoparticule et permettant ainsi d'attacher le Peptide à la nanoparticule. De nombreux chélates rendus lipophiles pour être associés à une membrane lipidique sont décrits en détail notamment dans les documents US 6 045821, W090/04943, WO 2006/100305. Selon des réalisations le chélate porte une longue chaîne lipophile (phospholipide par exemple) qui vient s'insérer dans la membrane de la nanoparticule lipidique (liposome, micelle, nanoémulsion). De même le PEPTIDE P porte avantageusement une chaîne lipophile (le Lien) qui vient s'insérer dans la membrane de la nanoparticule lipidique. Selon des réalisations avantageuses, la nanoparticule lipidique inclut des perfluorocarbones tels que décrits dans US 5,958,371, l'émulsion liquide contenant des nanoparticules comportant un perfluorocarbone à point d'ébullition assez élevé (par exemple entre 50 et 90 C) entouré d'un revêtement composé d'un lipide et/ou d'un surfactant. Le surfactant est capable de se coupler directement à un biovecteur de ciblage ou d'inclure un composé intermédiaire lié de manière covalente au biovecteur, le cas échéant à l'aide d'un agent de liaison chimique. Différentes émulsions de perfluorocarbone sont rappelées dans le document US 6 676 963 (perfluorodecalin, perfluorooctane, perfluorodichlorooctane, bromure de perfluoro-n-octyl, perfluoroheptane, perfluorodécane, perfluorocyclohexane, perfluoromorpholine, perfluorotripropylamine, perfluorotributylamine, perfluorodiméthylcyclohexane, perfluorotriméthylcyclohexane, éther de perfluorodicyclohexyl, perfluoro-n-butyltétrahydrofuran). On utilise habituellement comme phospholipides formant la membrane des nanoparticules les composés suivants : phosphatidylcholine dioléoylphosphatidylcholine, dimyristoylphosphatidylcholine, dipalmitoylphosphatidylcholine, distéaroylphosphatidylcholine, phosphatidyléthanolamine. De telles compositions sont décrites par exemple dans US 5,989,520 et US 5,958,371, comme rappelé dans le document US 20040248856 qui cite notamment des composés perfluorocarbone : perfluorodécalin, perfluorooctane, perfluorodichlorooctane, bromure de perfluoro-n-octyl, perfluoroheptane et analogues. Selon des réalisations avantageuses, on utilisera pour préparer des agents de contraste selon l'invention des méthodes et des compositions lipidiques appropriées rappelées dans US 6 010 682, notamment pour ce qui concerne la description détaillée de la composition lipidique, et de la préparation de liposomes, de micelles, d'émulsions. On rappelle que les émulsions sont des mélanges lipidiques hétérogènes obtenues de manière appropriée par agitation mécanique et/ou addition d'agents émulsifiants. Par exemple, on mélange mécaniquement les chélates rendus lipophiles à des solvants organiques tels que le chloroforme. Après évaporation du solvant, les lipides sont remis en suspension en milieu aqueux tel que PBS pour obtenir une émulsion qui subit ensuite typiquement une sonication et une microfluidisation. Les émulsions obtenues peuvent être lyophilisées avec le cas échéant utilisation d'agents anti agglutination. Pour formuler l'émulsion d'agent de contraste paramagnétique souhaité, on utilise typiquement 1 à 75% en poids de composé chélate lipophile par rapport aux ingrédients totaux de l'émulsion. La composition formant l'agent de contraste est administrée de préférence en intravasculaire, selon le patient examiné, par exemple à raison de 0,1 mg à 1 g de composé chélate lipophile et de 1 à 50 micromoles d'ion de métal paramagnétique par kg de patient. Les compositions lipidiques obtenues sont le cas échéant formulées à l'aide d'additifs rappelés dans US 6 010 682, notamment pour une administration par injection intraveineuse. On citera notamment le dextrose, le chlorure de sodium, des antimicrobiens. Avantageusement grâce aux compositions selon l'invention on peut obtenir une augmentation de la relaxivité par ion. On obtient typiquement les caractéristiques suivantes, pouvant varier selon les compositions précises des émulsions et leur procédé de préparation : - index de polydispersité : 0,2 à 0,3 - [Gd3+] = 2 à 10 mm de préférence 3 à 7 mM - concentration en particules : 50 à 100 nM - rl (mM-is-iGd-i) : 5 à 40, de préférence 10 à 40 - r2 (mM-is-iGd-i) : 20 à 40 - rl (mM-is-i particule-1) : 106 à 4x106 - nombre de biovecteurs : 50 à 1000, notamment 100 à 300 L'invention concerne aussi ces composés de formule (I) dans laquelle le Peptide contient une séquence peptidique modifiée, mais sans altérer l'affinité et la spécificité pour la cible et l'efficacité du composé in vivo. Le PEPTIDE P est par exemple modifié en utilisant des méthodologies appropriées décrites dans l'art antérieur par exemple dans US2005100963 (colonne 20-21 paragraphes [529] à [541] dans le cas de peptides ciblant des récepteurs KDR), afin de sélectionner des composés de formule (I) efficaces : 1) substitution d'acides aminés sans altérer leur fonction, selon la méthode rappelée dans ce document pour des acides aminés hydrophobe, aromatique, acide, contenant des hydroxyles, contenant des chaînes latérales amide. Par exemple, pour les acides aminés hydrophobes leucine Xl et isoleucine X2, on pourra tester l'utilisation d'une autre chaîne latérale aliphatique en CI_io linéaire ou ramifiée (alkyle, alcényle, alcynyle) . On pourra ainsi tester la substitution des acides aminés X1, X2 par d'autres acides aminés hydrophobes alkyle- substitués (alanine, leucine, isoleucine, valine, norleucine, S-2-aminobutyricacide). Pour la proline, on utilise aussi d'autres acides aminés hydrophobes, notamment des dérivés avec une amine secondaire. Pour X6 (phénylalanine) on teste l'utilisation d'autres acides aminés aromatiques (tyrosine, biphénylalanine, naphthylalanine, benzothienylalanine, et dérivés). On pourra en particulier faire le screening des dérivés du paragraphe [532] de US2005100963, notamment les dérivés substitués amino, alkylamino, dialkylamino, aza, halogénés, alkoxy, tels que la 2-,3- ou 4-aminophénylalanine, la 2-,3- ou 4-méthylphénylalanine. Pour X3 et X4 (lysine) on pourra utiliser aussi d'autres acides aminés dibasiques (arginine, histidine, ornithine) ou des dérivés de la lysine ou de ces autres acides aminés, notamment les dérivés alkyle, alcényle, aryle ; tels que des dérivés N-epsilon-isopropylelysine. On pourra en particulier tester les dérivés cités au paragraphe [533] de US2005100963; 2) substitution de liaisons amides présentes sur le squelette du polypeptide, notamment pour limiter la dégradation du peptide et/ou ajuster la flexibilité du peptide (par exemple insertion de alpha-N-méthylamide, ou d'une thioamide, remplacement d'un aminoacide par un aza aminoacide) ; 7) 3) introduction d'acides aminés de la série D, tels que la D-alanine afin de jouer sur l'accessibilité du peptide pour sa cible du fait d'un effet de la modification stérique sur l'orientation des chaînes latérales ; 4) modifications chimiques pour ajuster la solubilité et la pharmacocinétique du composé de formule (I), par exemple en ajoutant un groupe hydrophile, ou basique, ou groupe non polaire alkyle ou aromatique, à l'aide d'une liaison à la partie C ou N terminale du peptide, ou au niveau d'une chaîne latérale d'acides aminés du peptide, notamment au niveau de la lysine qui présente une fonction amine libre (ou d'un dérivé tel qu'un 2-,3-diaminopropionique acide) ; 5) glycosilation ; 6) autres modifications : - formation de sels : N-methylglucamine (méglumine), acétate, oxalates, ascorbates, etc - manipulation de la séquence peptidique (par exemple rétropeptide ou cyclisation). Ainsi pour le peptide D-A-H-S-X7-S (SEQ ID No 2), où avantageusement X7 est choisi parmi F ou L, on étudie aussi les peptides (SEQ ID No 7) avec : A remplacé par la leucine, l'isoleucine, la valine et dérivés H remplacé par la lysine ou l'arginine et dérivés S remplacé par la thréonine et dérivés L remplacé par l'isoleucine, la valine et dérivés. Ainsi pour le peptide P-G-D-L-X8-X9 (SEQ ID No 3), où avantageusement X8 est choisi parmi S ou V et X9 est choisi parmi T ou R, on étudie aussi les peptides (SEQ ID No 8) avec : L remplacé par l'isoleucine, la valine et dérivés T remplacé par la sérine R remplacé par la lysine D remplacé par l'acide aspartique Ainsi pour le peptide H-G-X10-L-S-X11 (SEQ ID No 4) où avantageusement X10 est choisi parmi D ou H, et X11 est choisi parmi T ou I, on étudie aussi les peptides (SEQ ID No 9) avec : L remplacé par l'isoleucine, l'arginine, la valine et dérivés H remplacé par la lysine ou l'arginine et dérivés G remplacé par l'asparagine T remplacé par la sérine I remplacé par la leucine, la valine et dérivés Ainsi pour le peptide VLGERG (SEQ ID No 5) on étudie aussi les peptides (SEQ ID No 10) avec: V remplacé par la leucine ou l'isoleucine L remplacé par l'isoleucine, l'arginine, la valine et dérivés E remplacé par l'acide aspartique R remplacé par la lysine Les tests biologiques décrits en détail dans la demande permettent de sélectionner des peptides efficaces équivalents ou améliorés en terme d'activité de ciblage de l'apoptose en comparaison avec les peptides exemplifiés en détail dans la présente demande. L'invention concerne selon un autre aspect les produits de contraste pour l'IRM comprenant un composé de formule (I) tel que décrit précédemment dont l'ion de métal paramagnétique M est de nombre atomique 21-29, 42-44 ou 58,70, de préférence de gadolinium. Les métaux paramagnétiques M incluent les lanthanides de nombre atomique 58-70 et les métaux de transition de nombre atomique 21-29, 42 or 44, par exemple scandium, titane, vanadium, chrome, manganèse, fer, cobalt, nickel, cuivre, molybdène, ruthénium, cérium, praseodymium, neodymium, prométhium, samarium, europium, gadolinium, terbium, dysprosium, holmium, erbium, thulium, et ytterbium. On préfère particulièrement les éléments Gd(III), Mn(II), europium, dysprosium, avantageusement M est choisi parmi Gd, Mn, Fe, Dy et Tm. L'invention concerne selon un autre aspect les produits de contraste pour l'imagerie aux rayons X ou à la CT, comprenant un composé (I) tel que décrit précédemment dont l'ion de métal lourd M est de nombre atomique 21-31, 39-50 , 56-80, 82, 83 ou 90. L'invention concerne selon un autre aspect des produits radiopharmaceutiques, comprenant un composé de formule (I) tel que décrit précédemment dont le chélate est couplé avec un radionucléide ou un radiohalogène connu de l'homme du métier, typiquement le gadolinium, le technétium, le chrome, le gallium, l'indium, l'ytterbium, le rhénium, le lanthanium, l'yttrium, le dysprosium, le cuivre ou analogue. Les radionucléides incluent les formes radioactives des éléments Sm, Ho, Y, Pm, Gd, La, Lu, Yb, Sc, Pr, Tc, Re, Ru, Rh, Pd, Pt, Cu, Au, Ga, In, Sn, Cr, Pb, notamment 99Tc, 117Sn, 111In> 97Ru, 67Ga, 68Ga, 89Zr> 177Lu, 475c> 105Rh> • 188Re> 60Cu> 62Cu> Cu, 6467Cu> 90Y> 159Gd, 149Pr, 166Ho ; avantageusement 68Ga. La préparation de composés utilisables comme radiopharmaceutiques notamment en utilisant le technétium 99Tc est rappelée dans US 2006/0018830 page 32 paragraphe 4, ces techniques étant décrites dans ce document pour des composés comprenant un chélate couplé à un peptide de ciblage de la gastrine. Pour des indications en radiothérapie, le couplage de macrocycles de type DOTA, la sélection de nucléides appropriés, la préparation des composés radiothérapeutiques est rappelée dans US 2006/0018830 colonne 35 et 36. L'invention concerne selon un autre aspect une méthode de diagnostique et une méthode de traitement radiopharmaceutique utilisant un composé de formule (I)tel que décrit précédemment. La présente invention concerne en outre une composition comprenant au moins un composé de formule générale (I) tel que décrit précédemment et un excipient pharmaceutiquement acceptable, avantageusement destinée à une administration par voie parentérale. Elle concerne de plus un procédé de préparation d'une telle composition comprenant l'addition d'un composé de formule générale (I) tel que défini précédemment à un milieu injectable comprenant l'excipient pharmaceutiquement acceptable. L'invention concerne l'utilisation d'une composition selon la présente invention pour le diagnostique d'une pathologie associée à l'apoptose. Les compositions diagnostiques et radiopharmaceutiques selon l'invention peuvent être utilisées comme décrit dans les demandes US 2002/0090342, US 2002/0098149, WO 02/055111 pour des indications anticancéreuses. L'invention concerne de plus les composés de formule générale (I) tels que définis précédemment pour leur utilisation en tant qu'agent de diagnostique de maladies associées à l'apoptose. L'invention concerne aussi l'utilisation des composés décrits précédemment pour la préparation d'une composition diagnostique ou radiopharmacautique destinée au diagnostique et/ou au traitement de maladies associées à 1'apoptose, avantageusement choisies parmi les maladies neurodégénératives chroniques, les maladies ischémiques et les pathologies inflammatoires. Elle concerne enfin l'utilisation d'un peptide ciblant l'apoptose de formules (1) à (5) telles que définies ci-dessus pour la préparation d'une composition de diagnostique de maladies associées à l'apoptose. Le cas échéant les composés de formule générale (I) du demandeur seront utilisés en tant qu'agent de diagnostique, ou en tant qu'agent de traitement thérapeutique au niveau de zones d'apoptose, ou en tant qu'agent de diagnostique et de traitement thérapeutique, ou de suivi diagnostique de l'efficacité thérapeutique. Le cas échéant le composé sera co- administré simultanément ou de manière différée avec d'autres agents diagnostiques et/ou thérapeutiques ciblant l'apoptose. L'invention concerne aussi une méthode d'imagerie comprenant la synthèse d'un composé comprenant un métal paramagnétique selon l'invention, capable de cibler une zone pathologique, son administration à un patient, l'imagerie par IRM. L'invention concerne aussi une méthode d'imagerie comprenant la synthèse d'un composé radiopharmaceutique selon l'invention, capable de cibler une zone pathologique, son administration à un patient, l'imagerie par scintigraphie gamma SPECT ou planaire, ou tomographie par émission de positrons. Pour un diagnostique en IRM, l'administration intraveineuse par injection habituellement en solution saline, se fait typiquement à une dose d'ion métallique de 0,001 à 1,5 20 mmole/kg de poids corporel, par exemple de 1 à 500 mol Gd/kg. Pour un diagnostique radiopharmaceutique, l'administration intraveineuse par injection habituellement en solution saline, se fait typiquement à une dose de 1 à 100 mCi pour 70 kg de poids corporel, de préférence de 5 à 50 mCi, avec une imagerie de diagnostic par exemple 30 à 180 minutes après l'injection pour le 99Tc. 25 Pour une utilisation comme agents de contraste aux rayons X , la concentration en atome lourd est typiquement de 0,1 M à 5 M, avec des concentrations par administration intraveineuse de l'ordre de 0,5 à 1,5 mmol/kg. L'invention concerne selon un autre aspect l'utilisation d'un composé de formule (I) tel que décrit précédemment pour la préparation d'une composition destinée à l'imagerie 30 optique. Des exemples d'administration de compositions pour l'imagerie médicale sont décrits dans l'art antérieur, par exemple dans le document WO 0226776 et US 2006/0018830 colonne 36 ([0282]) paragraphe 8 (dosages et additives). Des véhicules pharmaceutiquement physiologiquement acceptables permettant de former des compositions diagnostiques (produits de contraste) comprenant les composés décrits précédemment sont connus de l'art antérieur. On utilisera par exemple des sels (sodium, calcium, méglumine), des agents de contrôle du pH (acide acétique, citrique, fumarique, des antioxydants. L'invention concerne aussi un procédé de préparation de composés comprenant le couplage d'un Peptide avec au moins un chélate. Plusieurs méthodes générales de préparation de composés de formule (I) décrites dans le US2006/0018830 (Bracco) sont applicables en utilisant Peptide à la place des peptides de ces documents. Ces méthodes choisies en fonction notamment du chélate choisi sont rappelées dans 2006/0018830 colonne 37 ([0288] à ([0291]) ("general preparation of compounds , et alternative preparation of the compounds via segment coupling), par exemple les méthodes SPPS et FMOC. L'invention concerne aussi une méthode de diagnostique ou de traitement radiopharmaceutique comprenant l'administration d'un composé (I), la réalisation d'un examen d'imagerie à l'aide d'un équipement approprié, et l'analyse des résultats. L'invention couvre sauf indication contraire, toutes les formes chirales, diastéréoisomères, racémiques, notamment cis-trans, L-D des composés de formule (I) décrits. Le demandeur a aussi étudié les possibilités d'association d'un PEPTIDE P couplé à plusieurs chélates dans le composé de formule (I). Le demandeur a par ailleurs étudié des composés de formule (I) présentant un assemblage entre un ou plusieurs Peptides du composé de formule (I) ciblant l'apoptose, et un ou plusieurs chélates ; et de manière à ce que l'accès à la cible ne soit pas gêné malgré la présence du ou des chélates. Par exemple, le chélate est espacé du ou des PEPTIDES P par le Lien d'une taille suffisante et d'une structure chimique telles que la reconnaissance du ou des peptides par leur cible n'est pas altérée. Parmi les associations biovecteurs (peptides ou éventuels d'autres biovecteurs) /chélates, on peut citer notamment : - un peptide biovecteur central relié à plusieurs chélates identiques ou différents - un chélate central relié à plusieurs peptides identiques ou différents - un premier ensemble [peptide porteur de chélate(s)] couplé par l'intermédiaire d'un lien hydrophobe ou hydrophile à un second ensemble [peptide porteur de chélates(s)] , s'écrivant par exemple : Ch2-peptidelûLienûpeptide2-Ch2 avec Ch représentant des chélates identiques ou différents et peptidel et peptide2 représentant des Peptides identiques ou différents - un ensemble peptidel-(Lien porteur de Ch)ûpeptide2ûCh On utilisera par exemple la méthode de construction de composés multimériques décrite dans US2005/0100963 (WO2006/031885 page 66 ligne 25 à page 69 ligne 30) dans le cas de peptides ciblant des récepteurs KDR (par exemple à l'aide de la méthode 13 des exemples : preparation of homodimers and heterodimers ), mais en utilisant le PEPTIDE P (on remplacera par exemple les peptides des composés des figures 44 à 47 du US2005100963 par des PEPTIDES P). Le composé peut ainsi avantageusement comprendre un peptide couplé à plusieurs chélates, ou un chélate couplé à plusieurs peptides identiques ou différents. L'invention concerne aussi des composés mixtes comprenant en plus du PEPTIDE P au moins un autre biovecteur ciblant l'apoptose, le biovecteur étant soit un autre peptide soit un autre biovecteur mais non peptidique. On pourra le cas échéant coupler la partie peptide ou la partie chélate à des groupements chimiques permettant de favoriser la biodistribution, la durée de vie du produit dans le sang. La spécificité du produit fait référence à son affinité spécifique pour au moins un marqueur de l'apoptose ou de tout trouble pathologique associé, la spécificité de la liaison exprimée typiquement par des constantes Kd et Ka, la valeur Kd pour les marqueurs cibles étant inférieures à 10 M, de préférence inférieure à 1 M. Parmi les sels pharmaceutiquement acceptables, on citera notamment des sels de cations de bases inorganiques (potassium, sodium, calcium, magnésium...), des cations de bases organiques (éthanolamine, diéthanolamine, morpholine, glucamine, N-méthylglucamine, N, N-diméthylglucamine...), des anions d'acides inorganiques (notamment des chlorures, bromures, iodures, sulfates...), des anions d'acides organiques (acétate, succinate, citrate, fumarate, maléate, oxalate, trifluoroacétate...), des ions d'acides aminés (taurine, glycine, lysine, arginine, ornithine, acide aspartique, acide glutamique...). Dans la description détaillée qui suit, on décrit des peptides dont on a montré l'efficacité avec des variantes de réalisation sur différentes entités signal (PARTIE I) et les résultats biologiques (PARTIE II), La figure 1 représente le test de compétition avec l'annexine V La figure 2 représente la mesure de l'affinité du peptide LIKKPF (SEQ ID No 11) La figure 3 représente la mesure de l'affinité du peptide LIKKPF (SEQ ID No 11) couplé à un USPIO La figure 4 illustre des tests sur cellules apoptotiques réalisés avec un produit USPIOLIKKPF La figure 5 illustre l'affinité d'un produit DTPA-LIKKPF avec les cellules apoptotiques La figure 6 illustre le suivi dynamique du signal IRM du foie apoptotique de souris avec un produit DTPA-LIKKPF La figure 7 montre des images IRM sur souris ApoE obtenues avec un produit DTPALIKKPF, la figure 8 représente le rehaussement quantitatif correspondant EXEMPLES PARTIE I : préparation des composés incluant des PEPTIDES P. Généralités M : concentration molaire (mol/1). M/z : masse sur charge déterminée par spectrométrie de masse. ES+ : électrospray mode positif ES-: électrospray mode négatif kD : unité de masse moléculaire (kiloDalton) CCM : Chromatographie sur Couche Mince Z ave : diamètre hydrodynamique mesuré par PCS Dosage du Fer total: Le fer est dosé par spectroscopie d'absorption atomique (Spectrophotomètre VARIAN AA10) après minéralisation par HC1 concentré et dilution par rapport à une gamme étalon d'ions ferrique (0, 5, 10, 15 et 20 ppm) Taille des particules : Diamètre hydrodynamique de la particule greffée (Z ave) : Déterminé par PCS (appareil Malvern 4700, laser 488 nm à 90 ) sur un échantillon dilué à ù 1 millimolaire avec de l'eau PPI filtrée sur 0.22 m. PCS = Photon Correlation Spectroscopy = Technique par Diffusion de Lumière Dynamique ù Référence : R. Pecora dans J. of Nano. Res. (2000), 2, p 123-131. Analyses structurales : Par spectroscopie de masse (appareil MICROMASS VG Quattro II) avec une source Electrospray. Mesures de relaxivité : Les temps de relaxation Ti et T2 ont été déterminés par des procédures standards sur un appareil Minispec 120 (Bruker) à 20 Mhz (0,47T) et 37 C . Le temps de relaxation longitudinal Ti est mesuré en utilisant une séquence d'Inversion Récupération et le temps de relaxation transverse T2 est mesuré par une technique CPMG. Les vitesses de relaxation R1 (=1/T1) et R2 (=1/T2) ont été calculées pour différentes concentrations en métal total ( variant de 0,1.10-3 à 1.10-3 mole/L) en solution aqueuse à 37 C. La corrélation entre R1 ou R2 en fonction de la concentration est linéaire, et la pente représente la relaxivité rl (Rl/C) ou r2 (R2/C) exprimées en (1 / seconde) x (1/ mmol/L) soit (s1\/f1) Les nanoparticules ont été préparées selon les méthodes décrites dans le brevet W02004/058 275 (US 2004/253181) exemples 8 et 9 pour la préparation des solutions colloïdales de particules magnétiques et exemples 10 à 12 pour la complexation des particules magnétiques par un revêtement gem-bisphosphonate de l'exemple 1 de W02004/058 275. Exemple 1 : Couplage des peptides sur la particule d'oxyde de fer (produit PEG ù USPIO - PEPTIDE P) Les séquences peptidiques d'intérêt sont présentées dans le tableau suivant : N Séquence du PEPTIDE P 1 Asp-Ala-His-S er-Phe-S erOH 2 Leu-Ile-Lys-Lys-Pro-Phe-OH (SEQ ID No 11) 3 Pro-Gly-Asp-Leu-Ser-Arg-OH 4 Gly-Asp-Ala-His-Ser-Phe-SerOH y-Abu- Asp-Ala-His-Ser-Phe-SerOH 6 8-Amino-3,6-dioxaoctanoyl- Asp-Ala-His-Ser-Phe- SerOH 7 8-Amino-3,6-dioxaoctanoyl-Leu-Ile-Lys-Lys-Pro-Phe- OH Couplage du peptide: 30 ml de nanoparticules, [Fe] = 0,338 mol sont ultrafiltrés et agités à température ambiante, le pH est égal à 7,29. Le peptide N 2 (LIKKPF (SEQ ID No 11) ), protégé sous 5 forme de trifluoroacétamide sur les fonctions amines latérales des lysines, est dissout dans 1 ml d'eau (26,6 mg) et la solution obtenue est ajoutée progressivement en même temps que l'EDCI (25 mg). En fin d'ajout le pH est égal à 6,55. Le mélange est agité une nuit à température ambiante. Le pH est ajusté à 7 avec NaOH (0,1 N) et la solution est filtrée sur 0,22 m (filtres Durapore Millipore) puis ultrafiltrée sur une membrane de 30 kD (éliminer û 1 1 de filtrat). Volume final 30 ml (solution A). Les peptides 1, 3, 4, 5, 6 et 7 sont couplés selon le même mode opératoire. Couplage de l'amine hydrophile 24 ml de la solution obtenue précédemment (solution A) sont agités à température ambiante et une solution de 1,88g de l'amine polyhydroxylée (préparée selon le mode opératoire décrit dans le brevet EP 0 922 700 Al) est ajoutée dans 5 ml d'eau. Le pH est ajusté à 8 avec une solution d'HC1 et 600 mg d'EDCI sont introduits à température ambiante. Le milieu est agité une nuit, le pH est ajusté à 7,5 et la solution est filtrée sur filtre de porosité 0,22 puis ultrafiltrée sur une membrane de 30 kD. Volume final 20 ml (solution B). Déprotection des Lysines : La solution précédente (solution B) est agitée à température ambiante et le pH est ajusté à 10 avec une solution de NaOH. Après 6h d'agitation, la solution est filtrée sur filtre de porosité 0,22 puis ultrafiltrée sur une membrane de 14 kD. Couplage des amines polyéthylèneglycol, PEG-NH2 5 L'amino PEG-NH2 750 ( O-(2-aminoéthyl)-O'-méthylpolyéthylèneglycol 750 est obtenu chez FLUKA ). L'aminoPEG 350 est préparé selon la séquence réactionnelle suivante selon des modes opératoires décrits dans la littérature. 1(O-methyl-heptaethylene glycol) Fluka ~000~ioOH TsCI, Pyridine o NaN3 o0 o0 o0 oN=N=N 1 H2 , Pd/C ~o__ __o _off/ ~/~ 0 0 -iNH2 Les aminoPEG suivants sont disponibles chez les fournisseurs : Composé Poids Nom commercial fournisseur moléculaire O2 1088 m-dPEG24 amine Quanta 23 Biodesign ~O\ ~0 NH2 559 m-dPEG12 amine Quanta Biodesign ~O\ ~0 NH2 207 m-dPEG4 amine Quanta 3 Biodesign NH2 2000Da mPEG-NH2 Nektar n 24 ml de la solution USPIO-peptide protégé (solution A) sont agités à température ambiante et une solution de PEG 750-NH2 (1,57 g) dans 5 ml d'eau est ajoutée. Le pH est ajusté à 8 avec une solution d'HC1 et 1g d'EDCI est ajouté en deux portions égales. Le mélange est agité une nuit, le pH est ajusté à 7,5 et la solution est filtrée sur un filtre de 0,221.t puis ultrafiltrée sur une membrane de seuil de coupure 30 kD ; volume final 20 ml (solution C). Les autres aminoPEG sont couplés selon le même mode opératoire au départ de la solution A. Caractérisation : A. PEG750 - USPIO -peptide N 2 concentration 110 mM de fer PCS:26nm r2/rl (20 MHz, 37 C): 72,95/28,12 = 2,59 r2/rl (60 MHz, 37 C): 71,81/12,59 = 5,70 B. PEG2000- USPIO - peptide N 2 Concentration 20,96 mM de fer PCS : 40 et 150 nm r2/rl (20 MHz, 37 C): 273,46/36,66 = 7,46 r2/rl (60 MHz, 37 C): 312,79/16,28 = 19,21 C. PEG350- USPIO -peptide N 2 Concentration 142,59 mM de fer PCS : 25 et 90 nm r2/rl (20 MHz, 37 C) : 101,54/33,90 = 2,99 r2/rl (60 MHz, 37 C): 104,45/15,37 = 6,79 Exemple 2 : couplage des peptides sur des chélates de gadolinium30 + H2N-peptide NCS HOOC \ / COOH N N N HOOC / L A COOH COOH COOH N HOOC~ L COOH COOH HOOC GdC13 COO- Séquence des peptides couplés N Séquence Quantité mise en jeu 1 Asp-Ala-His-Ser-Phe-SerOH 33 mg 3 Pro-Gly-Asp-Leu-Ser-Arg-OH 32 mg Condensation des peptides et complexation : A une solution de peptide dans 2 ml d'eau est ajouté goutte à goutte le composé Bz-NCSDTPA (Macrocyclics ) dissous dans du DMF. Le pH du mélange réactionnel est ajusté à 10 avec une solution de NaOH et la solution est agitée pendant 48h. Le pH est ensuite ajusté à 7, et la solution est percolée sur une colonne de silice RPC18. Les fractions contenant le composé d'addition sont recueillies. Le ligand est ensuite complexé avec un équivalent de GdC13.6H20 pendant 6h. Spectres de masse ESI : PeptideN 3-DTPAGd: [M+H]+ : 1184 Peptide N 1-DTPAGd: [M+H]+ : 1204 Relaxivités mesurées à 20 MHz (37 C) : Peptide N 3-DTPAGd: 6.7 s-tmM-t Peptide N 1-DTPAGd: 6.8 s-tmM-t Gd3+ Couplage d'un peptide protégé sous forme de trifluoroacétamides latérales 8-Amino-3,6-dioxaoctanoyl-Leu-Ile-Lys(tfa)-Lys(tfa)-Pro-Phe-OH 7 350 mg Le peptide (350 mg, 0,323 mmol) est dissous dans 2 ml d'eau et le composé polycarboxylé (NCS-Bz-DTPA 420 mg, 0,646 mmol, 2 équivalents) en solution dans l'eau est ajouté goutte à goutte. Le pH du mélange réactionnel est ajusté à 10 avec une solution de NaOH et la solution est agitée pendant 48h. Le pH est réajusté à 7, et la solution est percolée sur une colonne de silice RPC18. Les fractions contenant le produit de condensation sont concentrées et le ligand est complexé avec un équivalent de GdC13.6H20 (0,235 mmol) pendant 6h. Caractérisation : Spectre de masse du complexe de gd Complexes ri à 0,47 T ri à 1,4 T (s-i.mM-1) (s-i.mM-1) Gd û DTPA - R826 9,6 10,1 Relaxivité du complexe de Gd Exemple 3 : synthèse d'un chélate bifonctionnel dérivé du DOTA Etape 1 : Ester benzylique de l'acide 5-(1,3-Dioxo-1,3-dihydro-isoindol-2-yl)-2-(1,4,7,1 Otétraaza-cyclo do déc-1 -yl)-p entanoïque 55 g de cyclen base (320 mmol) sont dissous dans 550 mL de CH3CN, auxquels sont ajoutés goutte à goutte 119,8 g de dérivé bromé (2-Bromo-5-(1,3-dioxo-1,3-dihydroisoindol-2-yl)-pentanoïque acide benzyle ester, 288 mmol) dissous dans 550 mL de CH3CN Le milieu est agité à température ambiante 1 nuit. Le précipité est filtré et lavé abondamment à l'acétonitrile. Obtention de 138 g de produit sous forme d'une poudre blanche (rendement corrigé 81,3 %). CCM : CH2C12/ MeOH / NH4OH à 25% (80/40/3) Révélation UV et CuSO4 Rf : 0,3 Etape 2 : Ester benzylique de l'acide 5-(1,3-Dioxo-1,3-dihydro-isoindol-2-yl)-2-(4,7, 10-tris-éthoxycarbonylméthyl-1,4,7,1 Otétraaza-cyclo do déc- 1 -yl) -pentanoïque A une solution de 59,1 g d'ethylbromoacétate (Aldrich , 358 mmol) dans le CH3CN (1,1 1) sont additionnées 60 g du composé obtenu à l'étape 1 (102 mmol) et 50,1 g de Na2CO3 (464 mmol). Le milieu réactionnel est chauffé à 80 C sous couverture d'argon pendant 15 une nuit. Après élimination du précipité, le filtrat est concentré et lavé abondamment au CH3CN. Le produit est cristallisé dans CH3CN par ajout goutte à goutte d'Et2O. Obtention de 89,8 g de produit sous forme d'un solide blanc (rendement corrigé 100 %). CCM : CH2C12 / MeOH (9/1) Révélation UV et KMnO4 Rf : 0,4 20 Etape 3 : Acide 5-Amino-2-(4,7,10-tris-carboxyméthyl-1,4,7,10tétraazacvclododéc-l-yl) -pentanoïque10 Dans le réacteur de 5 litres, on chauffe au reflux une solution de 54 g de composé obtenu à l'étape 2 (64 mmol) dans l'acide chlorhydrique 37 % (1,8 1), pendant une nuit. Après refroidissement et filtration, le filtrat est concentré et purifié sur silice silanisée (élution à l'eau). Après évaporation sous pression réduite, le produit est lavé à l'éther. Obtention de 45 g de produit sous forme d'un solide blanc. Le produit est désalifié par passage sur résine 0W. On isole 30 g de produit sous forme de cristaux blancs (rendement 100 %). HPLC : Hypercarb 5 , 200X4.6, 250À ; Solvant A : acide sulfurique 0,037 N Solvant B : CH3CN ; Détection UV à 201 nm ; Tr : 18 min. Etape 4 : Complexe de gadolinium de l'acide 5-Amino-2-(4,7,10-triscarboxyméthyl-1,4,7,1Otétraaza-cvclododéc-l-yl) -pentanoïque 7,2 g du composé obtenu à l'étape 3 (16 mmol) sont dissous dans 70 mL d'eau et le pH est ajusté à 5,5 par ajout d'acide chlorhydrique 6 N. On ajoute 2,9 g de Gd203 (8 mmol), et on chauffe à 80 C le milieu réactionnel. Le pH de la solution augmente régulièrement, et doit être maintenu entre 5,2 et 5,7 par ajout goutte à goutte d'acide chlorhydrique 6 N. Après deux heures, le pH se stabilise à 5,7. Le léger trouble est filtré sur filtre Whatman et le filtrat est concentré. Obtention de 11,1 g de produit sous forme de paillettes blanches (rendement corrigé 100 %). HPLC : Hypercarb 5 , 200X4,6, 250À ; Solvant A : acide sulfurique 0,037 N Solvant B : CH3CN ; Détection UV à 201 nm ; Tr : 10 min. Etape 5 : Complexe de gadolinium de l'acide 5-(2-Ethoxy-3,4-dioxocvclobut-1-énylamino)-2-(4,7,10-tris-carboxyméthyl-1, 4,7,1 Otétraaza-cvclododéc-1 -yl)-5 pentanoïque 8 g de composé obtenu à l'étape 4 sont séchés par distillation azéotropique au toluène, puis mis en suspension dans 90 ml de DMSO anhydre sous couverture d'argon. 2,8 ml de Et3N séchée sur tamis (1,7 éq) et 5 g de diéthylsquarate (Aldrich , 2, 5 éq.) sont ensuite 10 ajoutés. Le milieu est agité à température ambiante sous couverture d'argon pendant 1 heure. Le mélange est précipité dans 600 ml d'éther. Le solide obtenu est filtré, puis lavé au dichlorométhane. Après filtration et séchage, 7,5 g d'un solide blanc (rendement de 81,5 %)sont récupérés. HPLC : Symmetry C18, 5 , 250X4,6, 100À 15 A : eau TFA, pH = 2,7 ; B : CH3CN ; Détection à 201 et 254 nm ; Tr : 19,8 min. Exemple 4 : Couplages des peptides : N Séquence P M 1 Asp(tBu)-Ala-His(trt)-Ser(tBu)-Phe-Ser(tBu)OH 1073,31 2 Leu-Ile-Lys(Boc)-Lys(Boc)-Pro-Phe-OH 945,22 3 Pro-Gly-Asp-(tBu)-Leu-Ser(tBu)-Arg(Pbf)-OH 1008,25 4 Gly-Asp(tBu)-Ala-His(trt)-Ser(tBu)-Phe-Ser(tBu)OH 1130,36 y-Abu-Asp(tBu)-Ala-His(trt)-Ser(tBu)-Phe-Ser(tBu)OH 1158,42 6 8-Amino-3,6-dioxaoctanoyl- Asp(tBu)-Ala-His(trt)- 1218,47 Ser(tBu)-Phe-S er(tBu)OH 7 8-Amino-3,6-dioxaoctanoyl-Leu-Ile-Lys(tfa)-Lys(tfa)- 1082,16 Pro-Phe-OH CGdJ N o v o 0 0 Couplage des peptides protégés : Etape 1 : Couplage des peptide N 1, 2, 3, 4, 5, 6 ou sur le dérivé squarate Le composé obtenu à l'étape 5 de l'exemple 3 (100 mg, 1,35 10-4 mole) est dissous dans 15 ml de solution aqueuse de Na2CO3 pH 9,4. Le peptide protégé (1,6 10-4 mole) est introduit en maintenant le pH à 9,4 par ajout de Na2CO3. Si le peptide n'est pas soluble dans l'eau, quelques gouttes de DMF sont ajoutées jusqu'à dissolution complète. Après 48h de réaction à température ambiante, le milieu est précipité dans un mélange éthanol/éther éthylique. Le précipité est filtré puis séché. Etape 2 : déprotection Le composé obtenu à l'étape 1 ci-dessus est dissout dans un mélange de 10 cm3 de TFA/TIS/H20 dans les proportions 90/5/5. Le milieu est agité 5h à température ambiante puis le solvant est évaporé sous pression réduite. Le résidu est repris dans l'éther éthylique et le précipité est filtré puis séché. Le produit est ensuite purifié par HPLC préparative sur une colonne Symmetry avec un éluant constitué d'eau/TFA PH 3/ CH3CN . Couplage d'un peptide protégé TFA peptide n 7 : 210 mg du composé obtenu à l'étape 5 de l'exemple 3 sont dissous dans 20 ml d'eau et le pH est ajusté à 9 avec une solution de Na2CO3. 350 mg de peptide protégé (peptide N 7) sont ajoutés et le pH est ajusté à 9,2. Le milieu est agité à température ambiante puis la solution est dialysée sur une membranes de seuil de coupure 1 kD pendant 48h puis chromatographiée sur colonne RP-18 (mélange MeOH/eau (50/50)). N Structure PM Spectrométrie de masse 1 00 o 0 1355,43 ES-m/z : --N o o OH OH 1354,2 N CN ~ N ~ OH r H H H H H LI 0 k 0 O`o h-OH N O - O O N H 2 oo- off o o O NH2 OH 1437,75 ES-m/z : N N _ O N u N J 1436,3 CN N ~H H v N O N N v H NH2 O H o o- O- O ~/ O O 3 HN~NH2 1336,47 ES-m/z : oyo O 0 NH 1335,1 N N _ O O O C ~H CNH~N~H H OH v O' 1 O V O OH O O ~0H O O 4 0 ô 0 1412,48 ES m/z ,--` 0 0 0 0 oH o oH 1412 CNGdN' N N N~N N~N N~N OFi N N H H~ O *(- Li O Ov O1O H = H = H q i O N O ~ II \~ O H ovo o 0 1440, 53 ES m/z ,--\ 0 0 0 0 o 1439 N H N O N N N N N v N N" N N" H H II o - 1Q O O O )rcH O N O O p H 6 O ~ o 1500,59 ES-m/z : O 1448 N N, o o o Cr ~ N~,O~~O~N~NN~NN~N01 H H H Oru-1 O ~~ O N O O O O o H 7 1582,91 ES-m/z : o o 1582 `N o 0 C~N1 ~ p H ,, H Nui N/~O N V `N N Y 'NH O~UN1 H H O \ H O O O o'- Exemple 5 :Couplages de chélates dérivés du DOTA et du PCTA DOTA carboxylate: OH OH OH O 10 Couplage peptidique d'un DOTA carboxylate sur un peptide protégé en présence d'EDCI et déprotection dans le TFA. SM : ES-, M/Z=1274 avec z=1 DOTA thio-urée : Condensation en milieu basique sur un isothiocyanate selon l'exemple 2 et déprotection dans le TFA. N Structure PM Spectrométrie de masse 1 0 o 0 381,53 ES-m/z : O rrl OH OH N 3N s H O H o H o 1379,5 -- N,,d N HAN `' N~H N~H OH Où _ H 1ûj O ~OH O N O O O O H 3 HN1NH2 362,57 ES-m/z : O NH 1361 N; 3N S O O O NdN~ H~N~N Nv N NN OH y' 4J OH O H O O O OH PCTA carboxylate . Couplage peptidique et déprotection dans le TFA. N H 10 NH2 SM : ES+, M/Z= 1336 avec z=1 PCTA thiourée : Condensation en milieu basique sur un isothiocyanate selon l'exemple 2 et déprotection dans le TFA. N PM Structure Spectrométrie de masse s o 0 OH OH 1358,52 ES+m/z : HN Il H 1359,8 ùN OH OH O N O O / I o \N H N Gd+ N O 0' /-1? O Molecular Weight =1358,52 3 HNyNH2 1339,56 ES+m/z : NH 1341 s H OII O O N~NY 'N N~N N~N OH V H O \ OH O H O N lllf OH N Gd N O O O~N' O O J\~ Or11( O PCTA squarate : Selon l'exemple 4 étapes 1 et 2. N Structure PM Spectrométrie d O masse 1 OH O OH 1332,42 ES+m/z : O o 1333,6 H .)L ~/" NHNHNH OH h- O Y O O OH N O î \ O O o LN /~ O H Ge N IN I -NN J O 2 NHz 1414 74 ES+ m/z 1416 o 0 ~ OH N II N~ N N H /N ~_/~H O = H O O H O \ ~~ O I O I O ~ O I O O Hz N N N O 3 HNNH2 1313,46 ES+ m/z: NH 1314 O O ~~ O O O e ~H 101 N HH O H O o I o IN IN ` Gd O Exemple 6: Préparation de lipopeptides Etape 1 : Hexadécanoate de pentafluorophénvle A une solution constituée de 3,85 g d'acide hexadécanoique et de 2,76 g de pentafluorophénol dans 20 ml de dioxane et 8m1 de DMF, sont ajoutés à 0 C, 3,1g de dicyclohexylcarbodiimide (DCC) dans 20 ml de dioxane. Le mélange est agité une nuit à température ambiante puis le milieu réactionnel est filtré et la solution obtenue est évaporée sous pression réduite. L'huile ainsi récupérée est reprise dans le cyclohexane pour donner un solide blanc (5 g). Température de fusion: 42-44 C. Etape 2 : Acylation des peptides Les peptides sont synthétisés sur phase solide en utilisant 2,5 équivalents de chaque aminoacide protégé Fmoc à chaque cycle de couplage. L'activation des acides carboxyliques est réalisée avec HATU, N-méthylmorpholine dans le DMF. Les groupements Fmoc sont coupés par traitement à la pipéridine (20% dans le DMF). Après introduction du dernier aminoacide de la séquence peptidique et coupure du groupement protecteur Fmoc, l'amine N-terminale du peptide est acylé par le composé préparé à l'étape 1 (2,5 équivalents) dissous dans CH2C12 en présence de HoBt et de N-méthylmorpholine. Le peptide est ensuite libéré de la résine et les groupements protecteurs des fonctions latérales sont coupés par action d'un mélange acide trifluoroacétique/thioanisole (95/5) durant 30 minutes à 0 C puis 2h à température ambiante. La résine est éliminée et le solvant est évaporé sous pression réduite. Le lipopeptide est précipité dans l'éther éthylique. Les produits sont purifiés par HPLC préparative sur colonne Vydac ODS en éluant avec un mélange Eau/acétonitrile/TFA. Structure Poids ES+ moléculaire m/z p 0 0 oH o oH 901,08 902,5 N N N N N OFi N o - 0 N NH, 983,40 986 o O O H~ OH N =YH o N\ H o N O" O NHz 40 O 884 882,12 H II H /OH O CH O EXEMPLES PARTIE II : mise en évidence de l'efficacité de PEPTIDES P Exemple II.1 : Peptide LIKKPF (SEQ ID No 11) L'affinité du peptide LIKKPF (SEQ ID No 11) est mesurée sur PS immobilisée (plaque ELISA). Le peptide est incubé à des concentrations croissantes de 5.10-14 M à 4,2.10-' M. L'annexin V-biotine est alors ajoutée à la concentration de 5.10-10 M qui correspond à sa valeur Kid pour la PS. L'incubation à 37 C se prolonge pendant 1,5 heure. L'annexine V liée est détectée par ajout d'une solution de streptavidine-HRP, puis d'une solution de substrat ABTS contenant 0,05% d'H202. La DO405 est mesurée pour calcul de la valeur IC50 du peptide. Exemple II.2. Produit de contraste USPIO-LIKKPF L'affinité de 1'USPIO-LIKKPF est mesurée sur PS immobilisée (120 ilg/mL). Après saturation des sites non spécifiques, l'USPIO-LIKKPF est incubé à des concentrations croissantes (122 nM û 4 mM en fer) pendant 2 heures à 37 C. Après lavage des puits, les molécules liées à la PS sont digérées dans un volume de HC1 5 N. Les échantillons sont digérés dans un volume de HC1 5N, 48h à 37 C, et le dosage de fer est fait par Bleu de Prusse (DO630). L'IRM vitro est réalisée sur des cellules apoptotiques (ou contrôles) pré-incubées avec l'USPIO-LIKKPF ou l'USPIO non fonctionnalisé (3 ou 4 mM en fer) pendant 2 heures à 37 C. L'apoptose des cellules Jurkat est induite par traitement à la camptothécine 2 M pendant 24 heures. Après incubation avec les USPIO, les cellules marquées sont transférées dans une solution de gélatine 0,2% pour l'analyse par IRM (Bruker AVANCE-200, 4,7 T, TR/TE = 3000/20 ms, 30 échos, matrice = 256 x 256, FOV = 4 cm, épaisseur de la coupe = 1 mm) dans des puits de plaque ELISA. Exemple II.3 : Produit de contraste Gd-DTPA-LIKKPF Les peptides LIKKPF (SEQ ID No 11) et FKIPKL (peptide scramble - séquence mélangée) sont greffés séparément sur un chélate de Gd-DTPA. Les peptides protégés par du TFA sur deux Lys sont attachés au linker 8-amino-3,6-dioxooctanoyl. Le peptide protégé est couplé au DTPA-isothiocyanate (NCS-Bz-DTPA), puis les Lys sont déprotégées dans un milieu basique. Des cellules Jurkat apoptotiques en suspension (2.106 cellules/mL) sont incubées en présence du produit Gd-DTPA-LIKKPF aux concentrations 400, 200 et 100 M en Gd. Les cellules sont incubées 2 heures à température ambiante. Après rinçage et centrifugation, le culot cellulaire est minéralisé dans des conditions acides et les quantités de Gd sont mesurées par ICP-MS (inductively coupled plasma û mass spectrometry). L'efficacité de ciblage du produit Gd-DTPA-LIKKPF par IRM a été aussi évaluée sur un modèle de foie apoptotique chez la souris. L'apoptose est induite par une injection i.v. (veine caudale) d'anticorps monoclonal anti-Fas chez la souris Balb/c anesthésiée (Blankenberg et al., 1998, 1999 ; Rodriguez et al., 1996). Avant l'acquisition IRM, les souris sont anesthésiées au pentobarbital. Les expériences sont réalisées à l'aide d'un spectromètre Bruker de 200 MHz (4,7 T) équipé d'un aimant vertical et d'un système de mini-imagerie. Les images sont acquises à l'aide d'une séquence MSME (multi-slice-multi-echo) avec les paramètres suivants : TR/TE = 307,4 / 14,7 ms, matrice = 256, FOV = 5 cm, épaisseur de la coupe = 3 mm, 8 coupes axiales (qui couvrent complètement la région abdominale incluant les reins), TA = 5 minutes 14 secondes. Les images sont acquises avant et après l'injection des produits de contraste, jusqu'à 1,5 heure. L'intensité de signal (SI) est mesurée dans le foie. La valeur SI est aussi mesurée dans un tube rempli avec une solution aqueuse 2% de gélatine enrichie avec 50 M Gd-DTPA, utilisé comme produit de référence, dans une région en dehors de l'image de la souris qui correspond au bruit de fond. Le protocole d'IRM est le suivant : (1) l'IRM pré-contraste commence 1h15 après l'injection d'anti-Fas ; (2) le produit de contraste est injecté dans la veine fémorale à la dose 60 mol Gd/kg environ 1h45 après l'injection d'anti-Fas ; (3) plusieurs acquisitions post-contraste sont réalisées pendant 1h30. Un protocole de compétition est réalisé par injection de 100 mol peptide/kg 10 minutes avant l'injection du produit de contraste Gd-DTPA-LIKKPF.35 L'efficacité de ciblage du produit Gd-DTPA-LIKKPF a été aussi évaluée sur un autre modèle d'apoptose : la souris apoE_i-, modèle d'athérosclérose. Des souris femelles C57B1 ApoE_i_ âgées environ de 15 mois sont soumises à un régime riche en cholestérol pendant 3 mois avant les études IRM. Pour l'acquisition par IRM les animaux sont anesthésiés au pentobarbital. L'agent de contraste Gd-DTPA-LIKKPF est injecté par voie i.v. à la dose de 100 mol Gd/kg. Toutes les images sont acquises au niveau de l'aorte abdominale, en particulier la région proche du rein qui est connue pour le développement de plaques d'athérome en raison de la présence des branches artérielles. Les paramètres de la séquence RARE (Rapid Acquisition with Relaxation Enhancement) sont ajustés en utilisant un tube référence rempli d'une solution 1 mM de Gd-DTPA. Les paramètres d'acquisition d'images sont les suivants : TR = 470,9 û 1048,5 ms, TE = 4 ms, facteur RARE = 1 û 4, NEX = 4, matrice = 256 x 256, FOV = 2,3 cm, largeur spectrale = 33,33 kHz, épaisseur de la coupe = 0,8 mm, résolution spatiale = 90 m. Pour les deux modèles, les valeurs SI sont mesurées dans différentes régions d'intérêt (au niveau de la paroi artérielle de l'aorte abdominale ou foie entier) à l'aide du logiciel d'analyse d'image OSIRIS. Les régions sont d'abord dessinées sur les images post-contraste, puis dupliquées sur les images pré-contraste. La valeur SI est mesurée sur toutes les coupes d'images où la paroi artérielle et le foie sont visibles. Finalement, les valeurs SI obtenues pour des coupes sériées d'aorte sur une longueur de 3,2 û 8 mm sont moyennées pour chaque animal. Le ASNR% est calculé selon l'équation suivante : ASNR% = [(Slpost / SDbruit) û (SIp7é / SDbruit)]/[SIp7é / SDbn,itt] X 100 où SDbruit est la déviation standard du bruit mesuré sur une région en dehors de l'animal. II.4 Résultats : affinité des PEPTIDES P Le demandeur a identifié plusieurs séquences consensus : - VLGERG (SEQ ID No 5) et LIKKPF (SEQ ID No 11) - D-A-H-S-X7-S (SEQ ID No 2), où X7 peut être F ou L -P-G-D-L-X8X9 (SEQ ID No 3), où avantageusement X8 est choisi parmi S ou 30 V et X9 est choisi parmi T ou R H-G-X10-L-S-X11 (SEQ ID No 4) et ses équivalents fonctionnels, où avantageusement X10 est choisi parmi D ou H, et X11 est choisi parmi T ou I L'affinité (en ordre de grandeur) de ces peptides pour la PS (constante de dissociation apparente K*d) est comprise entre 10-6 et10-9 M. Le peptide LIKKPF (SEQ ID No 11) à forte spécificité a été particulièrement bien caractérisé. La spécificité d'interaction du peptide avec la PS est confirmée à l'aide du test de compétition à l'annexine V. La valeur IC50 de l'annexine V est égale à 1,08.10-9 M (figure 1). Exemple II.5 Peptide LIKKPF (SEQ ID No 11) Le test vitro sur PS immobilisée permet de calculer une valeur ICso (figure 2). Exemple II.6. Produit de contraste USPIO-PEG-PEPTIDE P avec PEPTIDE P étant LIKKPF (SEQ ID No 11) (également désigné USPIO-LIKKPF) Le test d'interaction de l'USPIO-LIKKPF avec la PS immobilisée permet de mesurer une valeur K*d de 7,85.10-8 M. La spécificité d'interaction de l'USPIO-LIKKPF avec la PS est vérifiée avec un test de compétition à l'annexine V. La valeur ICso est égale à 4,2.10-' M. (figure 3) L'IRM sur cellules montre que l'USPIO-LIKKPF se lie spécifiquement aux cellules apoptotiques. En effet, l'intensité de signal IRM enregistrée avec ces cellules est plus faible que celle obtenues avec les cellules contrôles. De plus, la baisse de signal IRM induite par l'incubation avec l'USPIO-LIKKPF est plus importante que celle enregistrée avec l'USPIO non fonctionnalisé (USPIO-PEG non couplé au peptide LIKKPF (SEQ ID NO 11)) û cf Figure 4 (cellules apoptotiques ; la colonne gauche correspond à la concentration 3 mM, la colonne droite correspond à la concentration du Fe de 4 mM. L'ensemble de ces résultats démontre le ciblage spécifique de l'USPIO-LIKKPF pour des cellules apoptotiques. Exemple II.7 : produit de contraste Gd-DTPA-LIKKPF Le greffage du peptide LIKKPF (SEQ ID NO 11) sur le produit de contraste Gd-DTPA permet la conservation du ciblage des cellules apoptotiques. En effet, le dosage de ICPMS de cellules apoptotiques incubées avec le Gd-DTPA-LIKKPF prouve que leur interaction, concentration-dépendante, est supérieure à la capture du produit par les cellules contrôles (Figure 5). Après injection i.v. de 60 mol Gd/kg de produit, le suivi dynamique du signal IRM du foie apoptotique de souris (figure 6) montre un rehaussement avec le Gd-DTPA-LIKKPF supérieur à celui mesuré avec le Gd-DTPA-FKIPKL (scramble) ou le Gd-DTPA non fonctionnalisé. La pré-injection du peptide LIKKPF (SEQ ID NO 11) , à la dose 100 mol/kg, bloque le rehaussement causé par le Gd-DTPA-LIKKPF ce qui témoigne de la spécificité d'interaction entre le Gd-DTPA-LIKKPF et la PS. Par ailleurs, les trois produits (Gd-DTPA-LIKKPF, Gd-DTPA-FKIPKL et Gd-DTPA) n'ont permis de n'enregistrer qu'un rehaussement partiel de signal chez la souris saine. L'ensemble de ces données prouve que le produit de contraste Gd-DTPA-LIKKPF cible spécifiquement l'apoptose in vivo via la PS. Exemple II.8 : Imagerie Dans un modèle d'athérosclérose chez la souris (souris apoE_i-), l'injection i.v. de produit Gd-DTPA-LIKKPF, à la dose 100 mol Gd/kg, permet de détecter de manière 10 dynamique un rehaussement de signal supérieur à celui mesuré avec le produit non greffé (Gd-DTPA) au niveau de l'aorte abdominale (figures 7 et 8 - Séquence RARE, 27 minutes après injection de produit de contraste - IRM de coupes sériées de l'aorte abdominale sur une longueur de 3,2 mm). Ce résultat indique que le produit Gd-DTPALIKKPF est capable de cibler spécifiquement la plaque d'athérome, via l'interaction avec 15 la PS.5 REVENDICATIONS 1. Composé de formule générale (I) suivante : Signal ù Lien ù Peptide (I) dans laquelle Signal représente une entité signal ; Lien, présent ou non, représente une liaison chimique et Peptide représente un peptide comprenant un peptide ciblant l'apoptose, le peptide ciblant l'apoptose étant choisi parmi les peptides de formule suivante et leurs équivalents fonctionnels: - Xl-X2-X3-X4-X5-X6 (1) (SEQ ID No 1) dans laquelle Xl et X2 représentent indépendamment l'un de l'autre la leucine ou l'isoleucine, X3 et X4 représentent la lysine, X5 représente la proline et X6 représente la phénylalanine, avantageusement le peptide L-I-K-K-P-F (SEQ ID No 11) et ses équivalents fonctionnels. - D-A-H-S-X7-S (2) (SEQ ID No 2) dans laquelle X7 représente la phénylalanine ou la leucine ; -P-G-D-L-X8-X9 (3) (SEQ ID No 3) dans laquelle X8 représente la sérine ou la valine et X9 représente la thréonine ou l'arginine ; - H-G-X10-L-S-X11 (4) (SEQ ID No 4) dans laquelle X10 représente l'acide aspartique ou l'histidine, et X11 représente la thréonine ou l'isoleucine ; - V-L-G-E-R-G (5) (SEQ ID No 5); et les sels pharmaceutiquement acceptables de ces composés. 2. Composé selon la revendication 1 dans laquelle Peptide est un peptide de formule LIKKPF (SEQ ID No 11) . 3. Composé selon la revendication 1 ou 2 dans laquelle Signal est un chélate couplé ou non à un métal paramagnétique M, M étant choisi avantageusement parmi Gd, Mn, Fe, Dy et Tm .4. Composé selon la revendication 1 ou 2 dans laquelle Signal est un chélate couplé ou non à un radionucléide. 5. Composé selon la revendication 4 dans laquelle le radionucléide, est le Ga68 pour l'imagerie PET. 6. Composé selon les revendications 3 à 5 dans laquelle le chélate est choisi parmi : DOTA, DTPA, DO3A, HPDO3A, TRITA, TETA, BOPTA, NOTA, PCTA, DOTMA, AAZTA, HOPO et leurs dérivés. 7. Composé selon la revendication 1 à 6 dans laquelle Lien représente : a) un groupe de formule : Q1ù1ùQ2, dans laquelle Q1 et Q2 identiques ou différents représentent O, S, NH, CO2, - NHCO, CONH, NHCONH, NHCSNH, SO2NH- ou NHSO2-, et 1 représente un groupe alkyle, alcoxyalkyle, polyalkoxyalkylène, alcényle, alcynyle, alkyle interrompu par un ou plusieurs squarate, par un ou plusieurs aryles, avantageusement phényle, ou par un ou plusieurs groupes choisis parmi -NH-, -0-, -CO-, -NH(CO)-, -(CO)NH-, -O(CO)-, ou -(OC)0- ;, b) un groupe (CH2),,, (CH2)ri CO-, -(CH2)äNH-CO- avec n = 2 à 10 , (CH2CH2O)q(CH2)r CO- , (CH2CH2O)q(CH2)rNH-CO- avec q = 1-10 et r=2-10, 0. .0 N H (CH2)n-CONH ù , (CH2)ri CONHùPEG, (CH2)ri NH-, (CH2)n (CH2)n\ NN PEG _ (CH2)n H H , avec n=1 à 5 et avantageusement n=4 ou 5, HOOC-CH2-O-(CH2)2-O-(CH2)2-O-CH2000H ; HOOC-(CH2)2-CO2-(CH2)2-OCO-(CH2)2-COOH ; HOOC-CH(OH)-CH(OH)-COOH; HOOC-(CH2)ri COOH; NHz-(CH2)n-NHz, avec n=1-20; NH2-(CH2)ä-CO2H ; ou NH2-CH2-(CH2-O-CH2)n CO2H avec n=1 à 10. 8. Composé selon la revendication 1 ou 2 dans laquelle Signal représente une nanoparticule superparamagnétique revêtue d'une couche organique, de préférence ayant un noyau en oxyde de fer. 9. Composé selon la revendication 8 dans laquelle la couche organique est une couche gem-bisphosphonate. 10. Composé selon la revendication 1 ou 2 dans laquelle Signal représente un marqueur pour imagerie optique. 11. Composé selon la revendication 1 ou 2 dans laquelle Signal représente une nanoparticule lipidique comprenant au moins un chélate, avantageusement le chélate est tel que défini dans la revendication 6. 15 12. Composition pour imagerie médicale comprenant au moins un composé de formule générale (I) selon l'une des revendications 1 à 11 et un excipient pharmaceutiquement acceptable, avantageusement destinée à l'administration par voie parentérale. 20 13. Procédé de préparation de la composition selon la revendication 12 comprenant l'addition d'un composé de formule générale (I) selon l'une des revendications 1 à 11 à un milieu injectable comprenant l'excipient pharmaceutiquement acceptable . 14. Composé de formule générale (I) selon les revendications 1 à 11 pour son 25 utilisation en tant qu'agent de diagnostique de maladies associées à l'apoptose. 15. Utilisation d'un composé (I) selon l'une des revendications 1 à 11 pour la préparation d'une composition de diagnostique de maladies associées à l'apoptose, avantageusement choisies parmi les maladies neurodégénératives chroniques, les 30 maladies ischémiques et les pathologies inflammatoires. 16. Utilisation d'un peptide ciblant l'apoptose de formule définie dans la revendication 1, pour la préparation d'une composition de diagnostique de maladies associées à l'apoptose.10