Brevet FR2915489A1 — publié le 20081031

PHOSPHOTRIESTERASES HYPERTHERMOPHILES MUTEES ET LEURS UTILISATIONS --------------------------------------------------------------------------------------- La présente invention a pour objet des phosphotriestérases (PTE) hyperthermophiles mutées, et leurs utilisations en tant que bio-épurateurs dans le cadre de la décontamination des surfaces des matériaux, de la peau, ou des muqueuses, contaminés par des composés organophosphorés, ou dans le cadre de la préparation de vêtements, gants, cartouches, capteurs d'organophosphorés, ou dans le cadre de la préparation de médicaments utilisables dans le cadre de la prévention ou du traitement d'une contamination externe ou d'une intoxication interne par ingestion ou inhalation par des composés organophosphorés, ou dans le cadre de la dépollution des eaux polluées par des composés organophosphorés, ainsi que les séquences nucléotidiques codant pour ces PTE hyperthermophiles mutées et leur utilisation dans le cadre de la préparation de bactéries exprimant ces PTE, notamment à leur surface. Les organophosphorés (OPs) sont des molécules très toxiques, qui composent certains agents chimiques de guerre et pesticides. Certains de ces composés comme le paraoxon ou le parathion sont utilisés pour leur pouvoir insecticide. En effet, ils sont faciles à fabriquer et sont largement répandus dans les cultures des pays en voie de développement. Malheureusement, ces épandages massifs sont responsables de très nombreuses intoxications dans le monde (200000 décès par an selon l'OMS). Les OPs sont pour la plupart des produits instables car ils s'hydrolysent rapidement. Ils ne persistent donc pas dans l'environnement sous leur forme toxique. Par contre, certains produits développés par les armées sont beaucoup plus stables et dangereux, comme le sarin, le soman, le tabun ou le VX. Ces agents chimiques de guerre intéressent maintenant de plus en plus les terroristes. Le sarin notamment a déjà été utilisé lors d'attentats perpétrés par la secte Aum, en 1994 à Matsumoto et en 1995 dans le métro de Tokyo. Face à ces rnenaces grandissantes, l'étude et surtout la mise au point de moyens performants de décontamination est plus que jamais d'actualité. Les organophosphorés agissent par absorption percutanée et par inhalation. Ce sont des liquides très souvent incolores et inodores. L'intoxication par l'un de ces agents se manifeste rapidement (moins de 1 minute à 60 minutes) par des symptômes caractéristiques et extrêmement graves (jusqu'à la mort du sujet intoxiqué). Ces molécules, une fois ingérés dans l'organisme humain, jouent le rôle de neurotoxique. Elles s'attaquent à une enzyme très importante pour le bon fonctionnement du système nerveux : l'acétylcholinestérase. Cette enzyme est essentielle dans la transmission du message nerveux. En effet, lors du passage de l'influx de neurone à neurone, l'information électrique est transformée en message chimique dans la fente synaptique. Les molécules ainsi déversées sont appelées neurotransmetteur (exemple : l'acétylcholine). Une fois libérée dans la fente, l'acétylcholine se fixe majoritairement sur les récepteurs du neurone post-synaptique afin d'assurer la continuité du message nerveux. Les molécules fixées et non fixées doivent ensuite être recaptées ou dégradées, permettant ainsi la régulation de l'intensité et de la durée de l'influx. Le rôle des acétylcholinestérases est donc d'assurer l'arrêt du message nerveux, en dégradant l'acétylcholine dans la fente synaptique. Les OPs réagissent rapidement avec la sérine du site actif des acétylcholinestérases, ce qui forme une phosphoenzyme inactive. L'intermédiaire covalent ainsi formé, l'enzyme a perdu toute activité. Ces composés constituent donc des inhibiteurs irréversibles de ces enzymes. L'acétylcholine n'est alors plus dégradée dans la fente synaptique et s'accumule. Pour se prémunir de ces dangers, des protocoles de prévention et de décontamination sont prévus. Le matériel est, à l'heure actuelle, décontaminé à l'aide de soude (NaOH) très concentrée. Des tenues de protection et des masques ont été conçus pour éviter tout contact avec ces agents. En cas d'intoxication humaine, un traitement à la soude est bien évidemment inenvisageable. La victime est simplement décontaminée à l'aide d'une solution d'hypochlorite (eau de Javel) et lavée abondamment au savon et à l'eau. Des gants de Foulon permettent aussi d'absorber le liquide sur la peau de la victime. Pour les cas d'inhalation (percutanée ou non) de neurotoxiques, il existe un prétraitement à la pyrostigmine, pouvant être pris en cachet. Cette molécule bloque réversiblement les acétylcholinestérases et empêche les OPs de s'y fixer. La vie de l'individu est ainsi préservée. Par ailleurs, il existe aussi un traitement symptomatique d'urgence sous forme de seringues auto-injectantes contenant de l'atropine (anticholinergique), du diazépam (anticonvulsifiant) et de la pralidoxime (réactivateur des acétylcholinestérases inhibées). L'injection doit cependant être faite immédiatement après l'intoxication pour être efficace. Ceci n'empêche toutefois pas l'apparition de séquelles incapacitantes. Si des progrès ont été accomplis depuis vingt ans dans la prophylaxie avec les techniques citées précédemment, les traitements de ces intoxications et les protections existantes restent néanmoins insatisfaisants. Toutes les pistes pharmacologiques explorées semblent malheureusement conduire à une impasse. Cependant, l'émergence du concept d'épurateur biocatalytique ou bioscavenger a ranimé l'espoir d'un arsenal thérapeutique plus performant. En effet, l'idée d'utiliser des enzymes capables de piéger et/ou de dégrader les OPs sur la peau et dans le sang avant qu'ils n'atteignent leurs cibles biologiques neuromusculaires et centrales est particulièrement séduisante. La ButyrylCholinestérase (BuChe) humaine est une enzyme semblable à l'acéty(cholinestérase dont le rôle physiologique n'est pas clairement établi. Malgré cela, elle représente un grand espoir car elle piège dans la voie sanguine les organophosphorés avant qu'ils n'atteignent leurs cibles (Raveh et al.,1993). De plus, l'enzyme naturelle injectée à l'homme est particulièrement stable, avec une demi-vie de 11 jours. Toutefois, ce piégeur naturel est en quantité bien trop faible dans le sang pour nous protéger naturellement des dangers des OPs. Elle agit en fait comme un fixateur stoechiométrique des OPs : une enzyme rie peut neutraliser qu'une seule molécule. Un rapide calcul permet de montrer qu'il faut des quantités énormes d'enzyme pour obtenir un traitement efficace. Les moyens à employer semblent alors disproportionnés, et correspondraient à une dose de 200mg de protéine par injection et par soldat. Toutefois, et à défaut de mieux, la BuChE représente un projet concret notamment pour l'armée américaine qui a prévue la mise à disposition fin 2006 d'un million de doses pour ses soldats. La production de l'enzyme est assurée par génie génétique grâce à des chèvres transgéniques. La nécessité d'une telle quantité de protéine coûte néanmoins très cher, et malgré les moyens mis en oeuvre, cette entreprise constitue un challenge technologique majeur. Il existe bien quelques variants de BuChE ayant une activité OPhydrolasique mais leur catalyse est très lente en comparaison des enzymes capables d'hydrolyser naturellement les OPs. La Paraoxonase humaine (HPON1) est une OPhydrolase qui présente de nombreux avantages. Son rôle protecteur contre l'intoxication OP a été établi chez la souris. De plus, son origine humaine devrait éviter que les injections multiples des protocoles thérapeutiques n'induisent de réponse immune. HPON1 est une protéine du plasma principalement associée aux HDL. La structure tridimensionnelle de l'enzyme naturelle n'est pas résolue, seulement la structure d'une chimère entre PON1 humaine, de souris, de rat et de lapin, (Harel et al., 2004). Néanmoins, cette structure n'a pas permis d'obtenir des mutants plus actifs. De plus, une utilisation pharmacologique est dans l'immédiat impossible. En effet, toutes les tentatives pour obtenir de grande quantité de paraoxonase humaine active ont échouées pour des raisons techniques. D'autres OP-hydrolases prometteuses ont été isolées. Il s'agit des enzymes de la famille des phosphotriestérases (PTEs). Ces enzymes constituent de véritables épurateurs catalytiques découvert dans les bactéries du sol : notamment Pseudomonas diminuta et flavobacterium sp. (Munnecke, 1976) pour le gène opd, et Agrobacterium radiobacter pour le gène opdA (Jackson et al., 2005). Les PTEs sont des enzymes extrêmement prometteuses pour la mise au point d'un bioscavenger d'agents neurotoxiques. Mais ces enzymes possèdent aussi des intérêts fondamentaux : en effet, l'(les) implication(s) biologique(s) de ces dernières reste(nt) parfaitement inconnue(s). De plus, le mécanisme catalytique de ces enzymes extrêmement efficace possède quelques zones d'ombres. Les PTEs sont les plus actives des enzymes connues dégradant les OPs. Leurs études pourraient permettre de réaliser des traitements pour des décontaminations thérapeutiques (cutanées et ophtalmologiques) qui remplaceraient avantageusement le seul moyen efficace actuel qui est la soude. Cette dernière n'est bien évidemment pas utilisable sur des êtres vivants. Par ailleurs, les PTEs seraient aussi efficaces pour décontaminer des sols pollués par les pesticides. On pourrait également les utiliser pour détecter des pollutions aux OPs. Ainsi, des projets tentent de fixer chimiquement ces protéines à un support et de détecter la catalyse éventuelle par divers moyens comme la détection de signaux électriques ou par spectrophotométrie. Autre atout majeur, les PTEs sont capables d'hydrolyser un large spectre d'OPs, comme le parathion, le paraoxon, le soman, le sarin et le plus toxique de tous, le VX. Les hypothèses concernant l'origine de cette activité OP-hydrolase chez les bactéries sont multiples et controversées, même s'il semble plus vraisemblable que cette activité découle d'une proximité structurale de son substrat naturel avec ces poisons. En outre, le rôle physiologique de ces enzymes reste inconnu (Aubert et al., 2004). Il existe plusieurs gènes connus codant pour des PTEs mésophiles. Un premier gène (opd) a été isolé simultanément de P. diminuta et de Flavobacterium sp., et code une protéine de 365 acides aminées. Cette protéine possède un peptide signal de 29 résidus permettant son adressage dans l'espace périplasmique. Un autre gène connu (opda), isolé d'A. radiobacter (Jackson et al., 2005), code une protéine de 362 acides aminés possédant un peptide signal de 33 résidus. Ces deux protéines partagent 90% d'identité de séquence. Si ces PTEs mésophiles sont très actives vis-à-vis des OPs, elles sont cependant chères à produire, et peu stables. Récemment, une nouvelle protéine de cette famille a été isolée et purifiée (Merone et al., 2005). Cette métalloenzyme de 35,5 kDa, possède 31% d'identité de séquence avec la PTE de P. diminuta, a été isolée de l'archae Sulfolobus solfataricus. Cet organisme vit dans des conditions extrêmes (87 -93 C et pH 3.5-5). Ces dernières confèrent à cette protéine des propriétés de thermostabilité exceptionnelles. C'est une enzyme hyperthermophile dont l'activité maximale se situe vers 95 C, et qui est nettement moins active vis-à-vis du paraoxon que la PTE de P. diminuta. Une autre PTE hyperthermophile a été isolée de Sulfolobus acidocaldarius (Porzio et al., 2007). Les PTEs hyperthermophiles sont moins actives vis-à-vis des OPs que les PTEs mésophiles, mais présentent en revanche l'avantage d'être très stables et peu chères à produire. La présente invention a essentiellement pour but de fournir de nouvelles PTEs présentant l'avantage d'être à la fois : - plus actives vis-à-vis des OPs que les PTEs hyperthermophiles sauvages susmentionnées, - plus stables et moins chères à produire que les PTEs mésophiles sauvages susmentionnées. L'invention a également but de fournir de nouveaux composés bioépurateurs utilisables dans le cadre de la décontamination des surfaces des matériaux, de la peau, ou des muqueuses, contaminés par des composés organophosphorés, ou dans le cadre de la préparation de médicaments utilisables dans le cadre de la prévention ou du traitement d'une contamination externe ou d'une intoxication interne par ingestion ou inhalation par des composés organophosphorés, ou dans le cadre de la dépollution des eaux polluées par des composés organophosphorés. Un autre but de la présente invention est de fournir des kits pour la décontamination des surfaces des matériaux, de la peau, ou des muqueuses, contaminés par des composés organophosphorés, ou pour la dépollution des eaux polluées par des composés organophosphorés, ou pour la destruction des stocks de neurotoxiques. Un autre but de la présente invention est de fournir un capteur des ces composés 15 organophosphorés, présentant l'avantage d'être extrêmement sensible grâce aux capacités susmentionnés des nouvelles PTEs. Un autre but de la présente invention est de fournir des matériaux imprégnés de nouvelles PTEs présentant les avantages susmentionnés, sous forme liquide ou solide, tels que gants, vêtements divers (notamment immobilisation sur tissus pour tenues de protections chimiques), 20 lingettes, mousses pulvérisables. Un autre but de la présente invention est de fournir des compositions pharmaceutiques, notamment sous forme injectable ou de pommades, comprenant les nouvelles PTEs présentant les avantages susmentionnés, en association avec un véhicule pharmaceutiquement acceptable. Un autre but de la présente invention est de fournir des cartouches de décontamination 25 externe, à l'intérieur desquelles sont greffées des nouvelles PTEs, notamment pour décontaminer le sang d'une personne intoxiquée par les organophosphorés. Un autre but de la présente invention est de fournir des bactéries transformées à l'aide de séquences nucléotidiques codant pour ces nouvelles PTEs et exprimant ces dernières dans leur cytoplasme ou à leur surface, lesdites bactéries ainsi transformées étant susceptibles d'être utilisées 30 à leur tour dans le cadre de la décontamination des organophosphorés. L'invention a pour objet des phosphotriestérases (PTE) hyperthermophiles mutées dérivées des PTE hyperthermophiles répondant à la séquence consensus SEQ ID NO : 1, et comprenant l'une au moins des quatre mutations suivantes : - substitution de la tyrosine Y en position 98, -substitution de la tyrosine Y en position 100, - substitution de l'arginine R en position 224, - substitution de la cystéine C en position 259, de SEQ ID NO : 1 par tout autre aminoacide naturel ou non. Les PTEs hyperthermophiles mutées susmentionnées de l'invention ont l'avantage d'être thermostables, à savoir d'être des protéines capables de conserver leur activité enzymatique à des températures comprises jusqu'à 95 C (Merone et al., 2005). L'activité enzymatique des PTEs hyperthermophiles mutées susmentionnées de l'invention correspond notamment à l'activité d'hydrolyse des OPs telle que mesurée selon la méthode précédemment décrite (Merone et al., 2005). Cette thermostabilité leur confère l'avantage d'être peu chères à produire, d'une part car elles sont stables dans les solvants organiques ce qui leur permet de s'accommoder mieux aux procédés industriels, et, d'autre part, car elles sont très peu chères à purifier par la technique du chauffage des lysats cellulaires des cellules productrices de ces PTEs, telle que E. coli ; on obtient ainsi un grand rendement et une bonne pureté en une étape. Les PTEs hyperthermophiles mutées susmentionnées de l'invention ont également l'avantage d'être plus actives dans le cadre de l'hydrolyse des OPs (notamment selon la méthode susmentionnée), que les PTEs hyperthermophiles sauvages dont elles dérivent. L'invention a plus particulièrement pour objet les phosphotriestérases hyperthermophiles mutées susmentionnées, dérivées de la PTE hyperthermophile de Sulfolobus solfataricus correspondant à la séquence SEQ ID NO : 3, ou de la PTE hyperthermophile de Sulfolobus acidocaldarius correspondant à la séquence SEQ ID NO : 5, lesdites séquences SEQ ID NO : 3 et SEQ ID NO : 5 appartenant à la séquence consensus SEQ ID NO : 1, l'aminoacide en position 2 dans SEQ ID NO : 1 étant manquant dans SEQ ID NO : 3. L'invention concerne plus particulièrement les phosphotriestérases hyperthermophiles mutées susmentionnées, comprenant au moins les quatre mutations suivantes : - substitution de la tyrosine Y en position 98, -substitution de la tyrosine Y en position 100, - substitution de l'arginine R en position 224, - substitution de la cystéine C en position 259, de SEQ ID NO : 1 par tout autre aminoacide naturel ou non. L'invention a plus particulièrement pour objet les phosphotriestérases hyperthermophiles mutées susmentionnées, caractérisées en ce qu'elles comprennent également l'une au moins des mutations suivantes : -substitution de la valine V en position 28, - substitution de la proline P en position 68, - substitution de la thréonine T en position 69, -substitution de la leucine L en position 73, - substitution de l'aspartate D en position 142, - substitution de la glycine G en position 226, -substitution de la leucine L en position 227, - substitution de la phénylalanine F en position 230, - substitution du tryptophane W en position 264, - substitution du tryptophane W en position 279, de SEQ ID NO : 1 par tout autre aminoacide naturel ou non. L'invention concerne plus particulièrement les phosphotriestérases hyperthermophiles mutées susmentionnées, caractérisées en ce qu'elles comprennent les cinq mutations suivantes : - substitution de la valine V en position 28, -substitution de la leucine L en position 73, - substitution de l'aspartate D en position 142, - substitution de la glycine G en position 226, -substitution de la leucine L en position 227, de SEQ ID NO : 1 par tout autre aminoacide naturel ou non. L'invention a plus particulièrement pour objet les phosphotriestérases hyperthermophiles mutées susmentionnées, caractérisées en ce qu'elles comprennent les cinq mutations suivantes : -substitution de la proline P en position 68, substitution de la thréonine T en position 69, - substitution de la phénylalanine F en position 230, - substitution du tryptophane W en position 264, -substitution du tryptophane W en position 279, de SEQ ID NO : 1 par tout autre aminoacide naturel ou non. L'invention concerne plus particulièrement les phosphotriestérases hyperthermophiles mutées susmentionnées, dérivées des PTE hyperthermophiles répondant à la séquence consensus SEQ ID NO : 1, caractérisées en ce qu'elles comprennent l'une au moins des quatre mutations suivantes : - substitution de la tyrosine Y en position 98 par un tryptophane W, - substitution de la tyrosine Y en position 100 par une phénylalanine F, - substitution de l'arginine R en position 224 par une histidine H, - substitution de la cystéine C en position 259 par une leucine L, et, le cas échéant, l'une au moins des mutations suivantes : - substitution de la valine V en position 28 par une alanine A, - substitution de la proline P en position 68 par une valine V, - substitution de la thréonine T en position 69 par une sérine S, -substitution de la leucine L en position 73 par une isoleucine I, -substitution de l'aspartate D en position 142 par une thréonine T, -substitution de la glycine G en position 226 par une proline P, -substitution de la leucine L en position 227 par une histidine H, -substitution de la phénylalanine F en position 230 par une sérine S, -substitution du tryptophane W en position 264 par une alanine A, -substitution du tryptophane W en position 279 par une isoleucine I. L'invention a plus particulièrement pour objet les phosphotriestérases hyperthermophiles mutées susmentionnées, dérivées de la PTE hyperthermophile de Sulfolobus solfataricus correspondant à la séquence SEQ ID NO : 3, et comprenant l'une au moins des quatre mutations suivantes : - substitution de la tyrosine Y en position 97, - substitution de la tyrosine Y en position 99, - substitution de l'arginine R en position 223, - substitution de la cystéine C en position 258, de SEQ ID NO : 3 par tout autre aminoacide naturel ou non. L'invention concerne plus particulièrement les phosphotriestérases hyperthermophiles mutées susmentionnées, dérivées de la PTE hyperthermophile de Sulfolobus solfataricus correspondant à la séquence SEQ ID NO : 3, et comprenant au moins les quatre mutations suivantes : -substitution de la tyrosine Y en position 97, - substitution de la tyrosine Y en position 99, - substitution de l'arginine R en position 223, - substitution de la cystéine C en position 258, de SEQ ID NO : 3 par tout autre aminoacide naturel ou non. L'invention a plus particulièrement pour objet les phosphotriestérases hyperthermophiles mutées susmentionnées, dérivées de la PTE hyperthermophile de Sulfolobus solfataricus correspondant à la séquence SEQ ID NO : 3, caractérisées en ce qu'elles comprennent également l'une au moins des mutations suivantes : -substitution de la valine V en position 27, - substitution de la proline P en position 67, - substitution de la thréonine T en position 68, -substitution de la leucine L en position 72, - substitution de l'aspartate D en position 141, - substitution de la glycine G en position 225, -substitution de la leucine L en position 226, - substitution de la phénylalanine F en position 229, - substitution du tryptophane W en position 263, - substitution du tryptophane W en position 278, de SEQ ID NO : 3 par tout autre aminoacide naturel ou non. L'invention concerne plus particulièrement les phosphotriestérases hyperthermophiles mutées susmentionnées, dérivées de la PTE hyperthermophile de Sulfolobus solfataricus correspondant à la séquence SEQ ID NO : 3, caractérisées en ce qu'elles comprennent les cinq mutations suivantes : - substitution de la valine V en position 27, - substitution de la leucine L en position 72, - substitution de l'aspartate D en position 141, - substitution de la glycine G en position 225, - substitution de la leucine L en position 226, de SEQ ID NO : 3 par tout autre aminoacide naturel ou non. L'invention a plus particulièrement pour objet les phosphotriestérases hyperthermophiles mutées susmentionnées, dérivées de la PTE hyperthermophile de Sulfolobus solfataricus 20 correspondant à la séquence SEQ ID NO : 3, caractérisées en ce qu'elles comprennent les cinq mutations suivantes : substitution de la proline P en position 67, substitution de la thréonine T en position 68, substitution de la phénylalanine F en position 229, 25 - substitution du tryptophane W en position 263, substitution du tryptophane W en position 278, de SEQ ID NO : 3 par tout autre aminoacide naturel ou non. L'invention concerne plus particulièrement les phosphotriestérases hyperthermophiles mutées susmentionnées, dérivées de la PTE hyperthermophile de Sulfolobus solfataricus correspondant à la 30 séquence SEQ ID NO : 3, caractérisées en ce qu'elles comprennent l'une au moins des quatre mutations suivantes : - substitution de la tyrosine Y en position 97 par un tryptophane W, substitution de la tyrosine Y en position 99 par une phénylalanine F, substitution de l'arginine R en position 223 par une histidine H, substitution de la cystéine C en position 258 par une leucine L, et, le cas échéant, l'une au moins des mutations suivantes : - substitution de la valine V en position 27 par une alanine A, -substitution de la proline P en position 67 par une valine V, -substitution de la thréonine T en position 68 par une sérine S, -substitution de la leucine L en position 72 par une isoleucine I, -substitution de l'aspartate D en position 141 par une thréonine T, -substitution de la glycine G en position 225 par une proline P, -substitution de la leucine L en position 226 par une histidine H, a 0 -substitution de la phénylalanine F en position 229 par une sérine S, -substitution du tryptophane W en position 263 par une alanine A, -substitution du tryptophane W en position 278 par une isoleucine I. L'invention a plus particulièrement pour objet les phosphotriestérases hyperthermophiles mutées susmentionnées, dérivées de la PTE hyperthermophile de Sulfolobus solfataricus 15 correspondant à la séquence SEQ ID NO : 3, caractérisées en ce qu'elles correspondent aux séquences suivantes : - SEQ ID NO : 7 correspondant à la séquence SEQ ID NO : 3 comprenant les quatre mutations suivantes : * substitution de la tyrosine Y en position 97 par un tryptophane W, 20 * substitution de la tyrosine Y en position 99 par une phénylalanine F, * substitution de l'arginine R en position 223 par une histidine H, * substitution de la cystéine C en position 258 par une leucine L, - SEQ ID NO : 9 correspondant à la séquence SEQ ID NO : 7 comprenant en plus les cinq mutations suivantes : 25 * substitution de la valine V en position 27 par une alanine A, * substitution de la leucine L en position 72 par une isoleucine I, * substitution de l'aspartate D en position 141 par une thréonine T, * substitution de la glycine G en position 225 par une proline P, * substitution de la leucine L en position 226 par une histidine H, 30 - SEQ ID NO : 11 correspondant à la séquence SEQ ID NO : 9 comprenant en plus les cinq mutations suivantes : * substitution de la proline P en position 67 par une valine V, * substitution de la thréonine T en position 68 par une sérine S, * substitution de la phénylalanine F en position 229 par une sérine S, * substitution du tryptophane W en position 263 par une alanine A, * substitution du tryptophane W en position 278 par une isoleucine I. L'invention concerne plus particulièrement les phosphotriestérases hyperthermophiles mutées susmentionnées, dérivées de la PTE hyperthermophile de Sulfolobus solfataricus correspondant à la séquence SEQ ID NO: 3, caractérisées en ce qu'elles comprennent au moins une mutation correspondant à la substitution de l'un au moins des aminoacides des couples d'aminoacides suivants dont les positions dans SEQ ID NO : 3 sont indiquées ci-après par un autre aminoacide naturel ou non : 2R/314S, 14K/12E, 26R/75D, 26R/42E, 33R/42E, 33R/45E, 55R/52E, 55R/285E, 74R/121D, 811(/42E, 81K/43D, 84K/80E, 109R1113E, 123K/162E, 147K/148D, 151K/148D, 154R/150E, 154R/187E, 154R/188E, 161K/188E, 183R1150E, 183R/187E, 183R/180E, 210K/245D, 215K/214D, 223R/256D, 223R/202D, 234K/204D, 235R/202D, 241R/245D, 245I)1244K, 250K/249D, 277R/286D, 292K/298E, 310K/307E. L'invention a plus particulièrement pour objet les phosphotriestérases hyperthermophiles mutées susmentionnées, dérivées de la PTE hypertheimophile de Sulfolobus acidocaldarius correspondant à la séquence SEQ ID NO : 5, et comprenant l'une au moins des quatre mutations suivantes : - substitution de la tyrosine Y en position 98, - substitution de la tyrosine Y en position 100, - substitution de l'arginine R en position 224, - substitution de la cystéine C en position 259, de SEQ ID NO : 5 par tout autre aminoacide naturel ou non. L'invention concerne plus particulièrement les phosphotriestérases hyperthermophiles mutées susmentionnées, dérivées de la PTE hyperthermophile de Sulfolobus acidocaldarius correspondant à la séquence SEQ ID NO : 5, comprenant au moins les quatre mutations suivantes : - substitution de la tyrosine Y en position 98, - substitution de la tyrosine Y en position 100, -substitution de l'arginine R en position 224, - substitution de la cystéine C en position 259, de SEQ ID NO : 5 par tout autre aminoacide naturel ou non. L'invention a plus particulièrement pour objet les phosphotriestérases hyperthermophiles mutées susmentionnées, dérivées de la PTE hyperthermophile de Sulfolobus acidocaldarius correspondant à la séquence SEQ ID NO : 5, caractérisées en ce qu'elles comprennent également l'une aumoins des mutations suivantes : - substitution de la valine V en position 28, - substitution de la proline P en position 68, - substitution de la thréonine T en position 69, - substitution de la leucine L en position 73, - substitution de l'aspartate D en position 142, - substitution de la glycine G en position 226, - substitution de la leucine L en position 227, - substitution de la phénylalanine F en position 230, - substitution du tryptophane W en position 264, - substitution du tryptophane W en position 279, de SEQ ID NO : 5 par tout autre aminoacide naturel ou non. L'invention concerne plus particulièrement les phosphotriestérases hyperthermophiles mutées susmentionnées, dérivées de la PTE hyperthermophile de Sulfolobus acidocaldarius correspondant à la séquence SEQ ID NO : 5, caractérisées en ce qu'elles comprennent les cinq mutations suivantes : - substitution de la valine V en position 28, - substitution de la leucine L en position 73, - substitution de l'aspartate D en position 142, - substitution de la glycine G en position 226, -substitution de la leucine L en position 227, de SEQ ID NO : 5 par tout autre aminoacide naturel ou non. L'invention a plus particulièrement pour objet les phosphotriestérases hyperthermophiles mutées susmentionnées, dérivées de la PTE hyperthermophile de Sulfolobus acidocaldarius correspondant à la séquence SEQ ID NO : 5, caractérisées en ce qu'elles comprennent les cinq mutations suivantes : - substitution de la proline P en position 68, - substitution de la thréonine T en position 69, -substitution de la phénylalanine F en position 230, - substitution du tryptophane W en position 264, - substitution du tryptophane W en position 279, de SEQ 1D NO : 5 par tout autre aminoacide naturel ou non. L'invention concerne plus particulièrement les phosphotriestérases hyperthermophiles mutées susmentionnées, dérivées de la PTE hyperthermophile de Sulfolobus acidocaldarius correspondant à la séquence SEQ ID NO : 5, caractérisées en ce qu'elles comprennent l'une au moins des quatre mutations suivantes : - substitution de la tyrosine Y en position 98 par un tryptophane W, - substitution de la tyrosine Y en position 100 par une phénylalanine F, - substitution de l'arginine R en position 224 par une histidine H, - substitution de la cystéine C en position 259 par une leucine L, et, le cas échéant, l'une au moins des mutations suivantes : - substitution de la valine V en position 28 par une alanine A, -substitution de la proline P en position 68 par une valine V. -substitution de la thréonine T en position 69 par une sérine S, -substitution de la leucine L en position 73 par une isoleucine I, -substitution de l'aspartate D en position 142 par une thréonine T, -substitution de la glycine G en position 226 par une proline P, -substitution de la leucine L en position 227 par une histidine H, -substitution de la phénylalanine F en position 230 par une sérine S, -substitution du tryptophane W en position 264 par une alanine A, -substitution du tryptophane W en position 279 par une isoleucine I. L'invention a plus particulièrement pour objet les phosphotriestérases hyperthermophiles mutées susmentionnées, dérivées de la PTE hyperthermophile de Sulfolobus acidocaldarius correspondant à la séquence SEQ ID NO: 5, caractérisées en ce qu'elles correspondent aux séquences suivantes - SEQ ID NO : 13 correspondant à la séquence SEQ ID NO : 5 comprenant les quatre mutations suivantes * substitution de la tyrosine Y en position 98 par un tryptophane W, * substitution de la tyrosine Y en position 100 par une phénylalanine F, * substitution de l'arginine R en position 224 par une histidine H, * substitution de la cystéine C en position 259 par une leucine L, - SEQ ID NO : 15 correspondant à la séquence SEQ ID NO : 13 comprenant en plus les cinq mutations suivantes * substitution de la valine V en position 28 par une alanine A, * substitution de la leucine L en position 73 par une isoleucine I, * substitution de l'aspartate D en position 142 par une thréonine T, * substitution de la glycine G en position 226 par une proline P, * substitution de la leucine L en position 227 par une histidine H, SEQ ID NO : 17 correspondant à la séquence SEQ ID NO : 15 comprenant en plus les cinq mutations suivantes : * substitution de la proline P en position 68 par une valine V, * substitution de la thréonine T en position 69 par une sérine S, * substitution de la phénylalanine F en position 230 par une sérine S, * substitution du tryptophane W en position 264 par une alanine A, * substitution du tryptophane W en position 279 par une isoleucine I. L'invention concerne également les séquences nucléotidiques codant pour les phosphotriestérases hyperthermophiles mutées telles que définies ci-dessus. L'invention a également pour objet les vecteurs, notamment plasmides, contenant des séquences nucléotidiques codant pour les phosphotriestérases hyperthermophiles mutées telles que 10 définies ci-dessus. L'invention concerne également les cellules hôtes, notamment les bactéries, transformées à l'aide d'un vecteur tel que défini ci-dessus, de manière à ce que leur génome contienne des séquences nucléotidiques codant pour les phosphotriestérases hyperthermophiles mutées telles que définies ci-dessus, lesdites PTE hyperthermophiles mutées étant produites dans le cytoplasme des 15 cellules hôtes, ou secrétées à leur surface. L'invention a également pour objet l'utilisation de phosphotriestérases hyperthermophiles mutées telles que définies ci-dessus, ou de cellules hôtes transformées susmentionnées, en tant que bio-épurateurs dans le cadre de la décontamination des surfaces des matériaux, de la peau, ou des muqueuses, contaminés par des composés organophosphorés, ou dans le cadre de la préparation de 20 médicaments (ou bio-médicaments) utilisables dans le cadre de la prévention ou du traitement d'une contamination externe ou d'une intoxication interne par ingestion ou inhalation par des composés organophosphorés, ou dans le cadre de la dépollution des eaux polluées par des composés organophosphorés, ou dans le cadre de la destruction des stocks de neurotoxiques. L'invention a également pour objet des matériaux imprégnés de phosphotriestérases 25 hyperthermophiles mutées telles que définies ci-dessus, sous forme liquide ou solide, tels que gants, vêtements divers (notamment immobilisation sur tissus pour tenues de protections chimiques), lingettes, mousses pulvérisables. L'invention concerne également des kits pour la décontamination des surfaces des matériaux, de la peau, ou des muqueuses, contaminés par des composés organophosphorés, ou pour la 30 dépollution des eaux polluées par des composés organophosphorés, caractérisés en ce qu'ils comprennent des phosphotriestérases hyperthermophiles mutées telles que définies cidessus (le cas échéant sous forme lyophilisée), ou des matériaux imprégnés de phosphotriestérases hyperthermophiles mutées susmentionnés. L'invention a également pour objet des capteurs des composés organophosphorés susmentionnés, présentant l'avantage d'être extrêmement sensible grâce aux capacités décrites ci-dessus des phosphotriestérases hyperthermophiles mutées telles que définies ci-dessus. L'invention concerne également des cartouches de décontamination externe, à l'intérieur desquelles sont greffées des phosphotriestérases hyperthermophiles mutées telles que définies ci-dessus selon l'invention, et utilisables notamment pour décontaminer le sang d'une personne intoxiquée par les organophosphorés. L'invention concerne également des compositions pharmaceutiques caractérisées en ce qu'elles comprennent des phosphotriestérases hyperthermophiles mutées telles que définies ci-1 0 dessus, en association avec un véhicule pharmaceutiquement acceptable. L'invention a également pour objet des compositions pharmaceutiques telles que définies ci-dessus, caractérisées en ce qu'elles se présentent sous une forme administrable par voie injectable, ou par voie topique, notamment sous forme PEGylée ou encapsulée ou sous forme de pommade. L'invention sera davantage illustrée à l'aide de la description détaillée qui suit de la 15 phosphotriestérase de Sulfolobus solfataricus, et des mutations effectuées à cette dernière dans le cadre de la préparation de phosphotriestérases hyperthermophiles mutées telles que définies cidessus selon l'invention. Les organophosphorés (OPs) sont des molécules très toxiques, qui composent certains agents chimiques de guerre et des pesticides. Ces produits représentent de nos jours un grave problème de 20 santé publique (intoxications, pollutions des sols, pollutions des eaux). Les solutions actuellement disponibles ne sont malheureusement pas satisfaisantes. Néanmoins, les biotechnologies constituent une alternative extrêmement prometteuse. En effet, certaines enzymes utilisables comme bioscavenger sont capables de détruire avec une grande efficacité un large spectre de ces poisons. 25 I) Etude structurale de la phosphotriestérase de Sulfolobus solfataricus Cette enzyme, issue d'une archae, possède la caractéristique d'être hyperthermophile. Son étude permet d'approfondir les connaissances sur les protéines thermostables. Cette protéine, capable d'hydrolyser les OPs, est un candidat potentiel aux décontaminations environnementales et cutanées. Ce travail sert donc de base pour obtenir, par bio-ingénierie, des enzymes actives et 30 thermostables. Cette dernière caractéristique permet une production importante à faible coût. La protéine recombinante, produite par un organisme mésophile tel que Escherichia coli, peut être purifiée efficacement en une étape. Les lysats cellulaires sont chauffés, entraînant la précipitation des protéines mésophiles de l'hôte. Ne reste soluble que la protéine hyperthennostable. A) Matériel et méthodes 1. CRISTALLISATION Le clonage, l'expression, et la purification de la PTE hyperthermophile de S. Solfataricus chez E. coli sont décrits par Merone et al. (2005). L'enzyme a été concentrée à 5.8mg.mUl. Les essais de cristallisation ont été réalisés en utilisant la méthode de la diffusion de vapeur en goutte suspendue. Des volumes égaux, allant de 1 à 2 L de solution protéique et de la solution du réservoir ont été mélangés. Les gouttes résultantes ont été équilibrées contre une solution réservoir contenant de 15 à 18% (masse/volume) de polyéthylène glycol (PEG) 8000 en tampon Tris-HC1 pH 8. De très fins cristaux apparaissent après une semaine à 4 C. 2. COLLECTE DES DONNEES Les cristaux ont tout d'abord été transférés dans une solution cryoprotectante composée de la solution du réservoir et de 25% (volume/volume) de glycérol. Chaque cristal a ensuite été congelé instantanément dans de l'azote liquide. Les données de diffraction aux rayons X ont été collectées à 100 K sur la ligne FIP BM 30 du synchrotron de Grenoble. (ESRF, Grenoble, France). Pour ces 15 collectes, un détecteur MarCCD (165mm) a été utilisé. Un jeu de données a été enregistré à 2.6À de résolution. 3. DETERMINATION DE LA STRUCTURE Les données de diffraction ont été intégrées et mises à l'échelle grâce aux programmes XDS2000 et la suite de logiciels CCP4 (Collaborative Computational Project). Le premier 20 remplacement moléculaire a été réalisé avec PHASER en utilisant un modèle polyalanine déduit de la structure de la PTE de P. diminuta (code PDB : 1DPM). Deux molécules de protéines ont été trouvées dans l'unité asymétrique. Le site actif constitué de deux ions métalliques, était clairement visible. La carte de densité électronique a été améliorée en utilisant un procédé d'aplatissement de solvant et la moyennation par symétrie non cristallographique des deux molécules grâce au logiciel 25 DM. La construction manuelle du modèle a été réalisée en utilisant le programme COOT. Certaines chaînes latérales ont pu être placées et quelques boucles impliquées dans l'interface du dimère ont du être retirées. Un nouveau remplacement moléculaire a été réalisé en utilisant MOLREP, en fixant les deux premières solutions trouvées et en utilisant le modèle ainsi amélioré. Deux solutions supplérnentaires ont été trouvées, pour donner un total de quatre molécules dans l'unité 30 asymétrique (R= 46%, Rfree= 51%). Le modèle de structure a ensuite été construit manuellement et affiné par des successions de cycles des logiciels COOT et REFMAC. B) Résultats 1. STRUCTURE TRIDIMENSIONNELLE La PTE de S. solfataricus cristallise en PEG et les données de diffraction ont été collectées au synchrotron (ESRF, Grenoble, France). La structure de cette protéine a été déterminée par la méthode du remplacement moléculaire (voir Matériel et Méthodes), et affinée à 2.6 À de résolution à un facteur R de 21.8%, un Rfree de 28% et une bonne géométrie. La chaîne principale est entièrement visible dans la carte de densité, et ce pour les deux homodimères de l'unité asymétrique, malgré une résolution moyenne. La structure de cette PTE. hyperthermophile est telle que la molécule est approximativement I0 globulaire avec des dimensions d'environ 40 À x 54 À x 46 À. Sa topologie est très similaire aux deux PTEs mésophiles dont les structures sont déjà connues. La première est issue de P. diminuta (Vanhooke et al., 1994; code pdb: 1DPM) et la seconde est issue d'A. radiobacter (Jackson et al., 2005; code pdb: 2D2J). Cette structure hyperthermostable peut être décrite comme un tonneau ((3/a)8 distordu aussi appelé tonneau TIM. Elle consiste en 8 brins 3 parallèles formant le tonneau 15 flanqué par 11 hélices a. La superposition de ces trois structures résolues donne des déviations moyennes (RMS) pour la position des carbones a entre la PTE de S. solfataricus et celle de P. diminuta (sur 268 atomes) et entre la PTE de S. solfataricus et celle de A. radiobacter (sur 271 atomes) de 1.05 À et 1.11 À, respectivement. Il y a quelques différences majeures, à savoir deux raccourcissements de la structure de la 20 PTE de S. solfataricus comparée aux structures des PTE mésophiles. Le premier est localisé à l'entrée du site actif et consiste en la délétion d'une boucle de 15 résidus. L'autre raccourcissement concerne les deux extrémités de la chaîne polypeptidique. En effet, il y a 6 et 2 résidus en moins à l'extrémité C-terminal, 2 et 4 résidus en moins en N-terminal, par rapport aux PTEs de P. diminuta et d'A. radiobacter, respectivement. Une autre modification concerne la présence, dans la structure 25 de la PTE de S. solfataricus, de boucles supplémentaires impliquées dans la dimérisation. 2. INTERFACE DU DIMERE Tout comme les PTEs mésophiles (Benning et al., 1994; Jackson et al., 2005), la PTE de S. solfataricus cristallise en homodimère. Pour les deux PTEs mésophiles, l'aire de contact entre les monomères est d'environ 1350 À2, avec 62.5% de contacts hydrophobiques, et on compte environ 30 25 liaisons hydrogènes à l'interface. Dans la structure de la PTE de S. solfataricus, les boucles supplémentaires impliquées dans la formation du dimère augmentent la surface de contact. Les deux monomères semblent ainsi s'interpénétrer. En effet, l'aire de contact est de 1720 À2. Malgré cette augmentation, la quantité de liaisons hydrogènes à l'interface est du même ordre (environ 20). En fait, cette augmentation de la surface de contact est essentiellement due à des contacts hydrophobes supplémentaires. Ainsi, les contacts hydrophobes à l'interface représentent 68% de contacts totaux dans ce dimère. En outre, la conformation du dimère n'est pas identique à celle des PTEs mésophiles. Il y a un mouvement évident de la position relative du second monomère qui pourrait avoir été causé par les boucles supplémentaires impliquées dans la dimérisation. Un autre point intéressant concerne l'accessibilité globale au solvant de la protéine. En fait, toutes ces PTEs : celle de P. diminuta, d'A. radiobacter et de S. solfataricus, ont environ la même accessibilité au solvant en ce qui concerne les monomères (13076.1 À2, 12828.7 À2, 13039.4 À2, respectivement), et environ le même volume (42464.2 À3, 44313.2 À3, 43429.9 À3 respectivement). Par contre, le dimère hyperthermostable est plus petit (86950 À3) que les dimères mésophiles (88800 À). 3. POTENTIEL ELECTROSTATIQUE Les analyses du potentiel électrostatique avec Swiss-PdbVewer révèlent que la PTE de S. solfataricus est une protéine très chargée. En effet, la structure montre 39 Asp et Glu, 37 Lys et Arg qui sont autant de charges localisées à la surface de la protéine. Ce nombre très élevé de résidus chargés est la cause de la présence de nombreux clusters de charges. Une face est principalement chargée négativement, l'autre plutôt positivement. Cette répartition particulière des charges doit conférer à la protéine un très fort moment dipolaire. En outre, les frontières entre les deux monomères sont uniformément chargées négativement. Ceci est très surprenant, car des charges non complémentaires auraient plutôt tendance à augmenter l'énergie de répulsion entre les deux monomères. Une seule région de la protéine est peu chargée. Il s'agit d'une poche hydrophobe, qui correspond au site actif. Ce dernier est entouré de charges négatives, 4. LIAISONS IONIQUES Afin de compenser les énergies de couplage induites par ce grand nombre de charges et le fort moment dipolaire, la moitié de ces résidus chargés de surface est impliquée dans des ponts salins. La PTE de S. solfataricus compte 25 ponts salins par monomère à comparer avec les 15 unités pour les PTEs mésophiles. La majorité de ces ponts salins est uniformément localisée à la surface de la protéine. Comme décrit pour d'autres protéines hyperthermophiles, ce grand nombre de ponts salins forme des réseaux complexes de charges à la surface de la protéine. 5. DESCRIPTION DU SITE ACTIF Comme les PTEs mésophiles, le site actif de la PTE de S. solfataricus consiste en un centre bimétallique, localisé en C-terminal du tonneau R. Ces deux cations métalliques sont pontés par la molécule d'eau catalytique, et par un résidu modifié, une lysine carboxylée. L'enzyme utilise une lysine carboxylée plutôt qu'un glutamate probablement car la paire d'électrons portée par l'azote peut être délocalisée, et ainsi permettre à chacun des oxygènes de porter une charge négative, et ainsi de compenser les quatre charges formelles positives des deux métaux. Pour leur coordination, quatre histidines sont également impliquées, ainsi qu'un acide aspartique (Asp 256) et une autre molécule d'eau. Le métal le plus enfoui (appelé a) adopte une géométrie en bipyramide trigonale, cordinné par His 22, His 24, Asp 256, Lys 137 et la molécule d'eau pontante. Le métal le plus exposé au solvant (appelé (3) adopte une géométrie en bipyramide trigonale distordue, avec pour ligands His 170, His 199, Lys 137, la molecule d'eau pontante et une autre molécule d'eau. La molécule d'eau pontante est équidistante des deux métaux, avec une distance d'environ 2 À, et est en liaison hydrogène avec Asp 256 (2.68 À). Dans la PTE de S. solfataricus, le centre métallique, les quatre histidines, l'aspartate et la lysine carboxylée sont conservés et bien superposés avec les autres structures connues de PTE. La comparaison structurale avec les deux PTEs mésophiles a conduit à l'identification du site de fixation des phosphotriesters selon le site décrit (ChenGoodspeed et al., 2001). La nature chimique des chaînes latérales dans la cavité est globalement inchangée par rapport aux PTEs mésophiles, ce qui conduit probablement à une fixation similaire des phosphotriesters dans le site actif de la PTE de S. solfataricus. Bien que le repliement soit globalement similaire aux PTEs mésophiles, le site actif de la PTE de S. solfataricus est beaucoup plus étroit, à cause d'une légère modification du squelette peptidique et la présence de deux tyrosines (Tyr 97 et Tyr 99). En outre, à l'entrée du site actif, une boucle de neuf résidus crée un tunnel hydrophobe, qui est connecté au site actif. Ceci n'a pas été décrit dans les structures des PTEs mésophiles. C) Conclusion 1. THERMOSTABILITE :25 La PTE de S. solfataricus est une enzyme extrêmement stable. En effet, elle est active vis-à-vis du paraoxon jusqu'à des températures très élevées. Merone et al. (2005), n'ont, par ailleurs, pas trouvé son maximum d'activité pour des raisons techniques, mais jusqu'à 95 C, l'activité continue à augmenter. L'étude structurale de cette protéine montre quelques indices permettant d'expliquer le mécanisme de cette extraordinaire thermostabilité. :30 1.1 LE RACCOURCISSEMENT DE LA STRUCTURE La structure de la PTE S. solfataricus montre la délétion d'une grande boucle par rapport aux PTEs rnésophiles (voir résultats). Ceci est un cas classique, car les boucles des protéines thermostables sont très souvent plus courtes que celles de leurs homologues mésophiles (Vieille C., 1996), ce qui permet de stabiliser l'état natif, ou de défavoriser l'état dénaturé. Dans cette structure thermostable, les deux extrémités de la chaîne sont raccourcies et plus ancrées au coeur de la protéine. De plus, afin de renforcer ce coeur compact, ces deux extrémités sont en interaction ionique entre l'acide carboxylique terminal (Ser 314) et la chaîne latérale de Arg 2. Nous pouvons aussi noter que deux résidus prolines (Pro 4 et Pro 309) rigidifient un peu plus ces extrémités. Ce type de stabilisation mutuelle entre le N-terminal et le C-terminal est considéré comme un facteur augmentant la rigidité globale des protéines, et a également été décrit dans la phosphoribosyl anthranilate isomérase de T. maritima. En fait, la réduction de la flexibilité des boucles et des extrémités du squelette peptidique par leur stabilisation via un pont salin, ou bien leur raccourcissement ou leur délétion, contribue à l'augmentation globale de la stabilité de la protéine. 1.2 L'ASSOCIATION EN DIMERE Les boucles supplémentaires impliquées dans le dimère thermostable ont des conséquences. La première concerne l'assemblage des monomères. En effet, la conformation de ce dimère est différente de la conformation du dimère classique TIM. Un fait similaire a déjà été décrit pour le dimère TIM de Ttx (Walden et al. 2004). Une autre conséquence directe consiste en l'augmentation de la surface de contact entre les deux monomères, et conduit à une valeur extrême pour les complexes permanents (Lo Conte L. et al., 1999) (voir résultats). Le renforcement de cette interaction confirme que la dimérisation est un moyen important de thermostabilisation (Vieille et al., 2001). L"extrême hydrophobicité de cette surface de contact (Lo Conte L. et al., 1999) doit être un important facteur de stabilisation, étant donné que les contacts hydrophobes sont plus favorables à haute température. Ces boucles supplémentaires impliquées dans le dimère induisent également une modification du volume du dimère. En effet, les monomères de cette protéine hyperthermostable possèdent environ le même volume que les monomères des PTEs mésophiles. Par contre, son dimère est bien plus petit. Ceci est cohérent avec le fait que la minimisation du rapport surface/volume, comme c'est le cas pour cette protéine, peut augmenter la stabilité des protéines simultanément en réduisant l'énergie induite par les surfaces défavorables, tout en augmentant les interactions attractives internes (Sterner et Liebl, 2001). Le renforcement observé de ce dimère est cohérent avec la préférence des protéines 30 hyperthermostables à s'organiser en oligomères. Ceci a aussi été décrit pour des protéines TIM (Walden et al., 2004). 1.3 COMPARAISON DES SEQUENCES La séquence de cette protéine hyperthermostable montre une composition en acides aminés différente de celles des PTEs mésophiles (Merone et al., 2005). En fait, dans cette protéine de S. solfataricus, il y a une diminution du contenu en acides aminés polaires non chargés comme Gln, Asn, Thr et Ser. En effet, 50 (15.9% des résidus totaux) d'entre eux sont présents dans la PTE thermostable, alors qu'il y en a 65 et 60 (18. 3% et 19.7% des résidus totaux) dans les séquences des PTEs de P. diminuta et d'A. radiobacter, respectivement. Cette différence est une valeur typique entre des protéines hyperthermophiles et mésophiles (Sterner et Liebl, 2001). Les résidus Gln et Asn sont sujets à la déamination, qui peut être catalysée par les résidus Thr et Ser (Wright, 1991). Ceci signifie que Gln et Asn sont des maillons faibles dans la structure protéiques, à cause de leur tendance à la déamination qui peut conduire au clivage de la chaîne, particulièrement à des températures approchant ou dépassant 90 C. Il semble probable que ces maillons faibles sont protégés ou éliminés dans ces protéines thermostables. En moyenne, la neutralisation de ces points faibles conduit à une réduction globale du nombre de ces résidus dans les séquences hyperthermostables, comme le montrent les analyses statistiques (Szilagyi et Zavodszky, 2000). Par ailleurs, la séquence de la PTE de S. solfataricus montre une augmentation du contenu en acides aminés chargés. Elle contient 77 (24.5% des résidus totaux) résidus chargés Asp, Glu, Lys ou Arg, tandis que les deux PTEs mésophiles en contiennent 69 (environ 21% des résidus totaux). La structure tridimensionnelle montre que l'essentiel de ces résidus chargés est localisé à la surface de la protéine, ce qui correspond à des observations antérieures (Szilagyi et Zavodszky, 2000) sur les protéines hyperthermostables. Ces descriptions reflètent les grandes différences entre les proportions des résidus chargés et celles des résidus non chargés dans ce type de protéines, comme cela avait déjà été déduit par les comparaisons de génome entiers d'organismes hyperthermophiles et mésophiles (Fukuchi et Nishikawa, 2001). 1.4 LES INTERACTIONS ELECTROSTATIQUES Les analyses du nombre total de liaisons hydrogène en utilisant HBPLUS n'ont pas montré de différences significatives entre les PTEs mésophiles et la protéine hyperthermostable. Par contre, la 2:5 différence de stabilité entre ces protéines est certainement partiellement due au grand nombre de ponts salins observés pour la PTE de S. solfataricus, comparé aux protéines mésophiles. Les ponts salins sont décrits comme des éléments dominants dans les structures de protéines hyperthermophiles, car ils contribuent à la stabilité thermodynamique des protéines (Sterner et Liebl, 2001). Ainsi, parallèlement à l'augmentation de la thermostabilité des protéines, ces ponts 30 salins ont tendance à s'organiser en réseaux de charges, qui sont le plus souvent retrouvés à la surface de la protéine (Vieille C., 1996), comme observé dans cette structure. Un haut niveau de coopérativité entre les liaisons ioniques semble plus efficace pour la thermostabilité qu'une somme de paires d'ions isolées. La présence de ce grand nombre de ponts salins et leur organisation en réseaux semblent insuffisante pour expliquer seule l'incroyable thermostabilité de la PTE de S. solfataricus. En effet, l'augmentation du nombre de ponts salins entre les TIMs hyperthermophiles et leurs homologues mésophiles a seulement été décrite pour le TIM bactérien de Thermotoga maritima. Cette stratégie n'est vraisemblablement pas la seule pour atteindre la thermostabilité, étant donné que tous les TIMs d'archae précédemment décrits n'ont pas exploité les liaisons ioniques comme un moyen de thermostabilisation. La PTE de S. solfataricus est, à notre connaissance, le premier TIM d'archae qui possède un nombre significativement plus important de ponts salins que ses homologues mésophiles. Les protéines s'adaptent à des conditions extrêmes en conservant leur état fonctionnel, qui est caractérisé par une balance subtile entre stabilité et flexibilité. Etant donné que cette balance est basée sur quelquesliaisons hydrogènes, de ponts salins, d'interactions hydrophobes ou de raccourcissement de boucles, la thermostabilisation est évidemment atteinte avec une accumulation de nombreuses et subtiles améliorations à différents endroits de la protéine (Jaenicke, R. 1996). Il est également proposé qu'à température ambiante, les enzymes thermostables se montrent moins flexibles que leurs homologues mésophiles ; par contre, à leur température optimale d'activité, les deux enzymes montrent une flexibilité équivalente. La structure cristallographique de la PTE de S. solfataricus montre que sa rigidité accrue est causée par un certain nombre de différences structurales précises avec ses homologues mésophiles. Les déterminants possibles de sa thermostabilité sont les délétions et les stabilisations de régions flexibles ; la compaction et le renforcement du dimère ; et un nombre accru de paires d'ions qui sont en partie organisées en réseaux de charges. 2. LE SITE ACTIF 2.1 IMPLICATION BIOLOGIQUE Plusieurs OP-hydrolases ont été isolées et caractérisées. La plus connue d'entre elles est la PTE, qui a été originellement isolée des bactéries du sol. Le substrat naturel de ces enzymes reste toutefois inconnu. Comme la synthèse du plus efficace de leur substrat déterminé jusqu'à présent, à savoir la paraoxon, a été décrite pour la première fois en 1950, il existe quelques controverses concernant l'origine de cette activité. En effet, cela pourrait être une activité due à une proximité structurale de substrat, ou ces enzymes pourraient avoir évoluées spécifiquement contre ces molécules sur cette courte période de temps. En ce qui concerne la PTE de S. solfataricus, il semble peu probable que cette protéine ait évolué spécifiquement pour hydrolyser ces insecticides, puisque ces molécules sont très peu présentes dans le biotope de cette archae. De plus, son environnement (environ 90 C) conduirait à une dégradation spontanée extrêmement rapide de ces composés thermolabiles. La structure de cette enzyme met également en évidence un tunnel hydrophobe qui communique avec le site actif. Ce tunnel, plutôt étroit, pourrait être un indice pour des substrats physiologiques tels que les N-acyl L-homoserine lactones. Ce fait serait par ailleurs cohérent avec la découverte de ce gène au milieu d'un cluster de lipases (Merone et al., 2005). La présence de ce type de tunnel hydrophobe est classique pour ce type de substrats et a déjà été décrit (Musayev et al., 2005). Malgré trois prolines, la boucle de neuf résidus à l'origine du tunnel semble plus flexible que le reste de la protéine, avec un facteur d'agitation thermique moyen de 48 À2. Ceci suggère que cette boucle est suffisamment flexible pour une adaptation à la fixation d'un substrat, et suffisamment rigide pour le bon positionnement de ce dernier. La structure tridimensionnelle révèle aussi la présence dans la cavité du site actif d'un résidu cystéine. Ceci est intéressant, car ce type de résidu est, avec Met, Asn et Gln, considéré comme un acide aminé thermolabile pour des protéines hyperthermophiles. Généralement, il y a une diminution drastique de leur nombre dans ces protéines (Sterner et Liebl, 2001), comme cela est décrit pour Asn et Gln dans cette étude. Cys 258 est très accessible au solvant. La structure cristalline ne montre pas d'activation particulière de ce résidu. Toutefois, la connaissance de la réactivité de cette cystéine apporterait un élément intéressant pour l'établissement du rôle physiologique de cette enzyme. 2.2 NOUVEAU MECANISME PROPOSE Basé sur le mécanisme suggéré par Aubert et al. (2004), nous proposons pour cette nouvelle PTE hyperthermophile un nouveau mécanisme pour la PTE hyperthermophile activée ne faisant pas intervenir le transfert de proton précédemment décrit. Le centre bi-métallique est utilisé pour activer le substrat pour une attaque nucléophile en polarisant la liaison phosphore-oxygène. L'oxygène du phosphore se fixe sur le métal (3, ce qui augmente le caractère électrophile du centre phosphore et facilite l'attaque nucléophile de l'ion hydroxyde. En fait, la fixation de l'oxygène porté par le phosphore sur le métal (3 pourrait avoir augmenté la réactivité de la molécule d'eau en affaiblissant l'interaction de cette dernière sur le métal (3. Quand le substrat est complexé à ce centre bi-métallique, l'ion hydroxyde attaque le centre phosphore via un mécanisme de type SN2, qui entraîne la formation d'un intermédiaire pentavalent qui ponte les deux métaux. La charge négative qui se développe sur l'oxygène du phosphore est stabilisée par l'interaction avec les métaux, particulièrement le métal (3. La paire d'électrons de cet oxygène se rabat sur la liaison phopshore-oxygène, permettant le départ du groupement partant. Le produit phosphoré qui ponte les deux métaux est évacué du site actif par une nouvelle molécule d'eau du solvant. Par son pKa, cette molécule phosphorée est déprotonée par le solvant. Aubert et al. (2004) suggèrent l'existence d'un transfert de proton dans le mécanisme de la PTE de P. diminuta. Brièvement, dans ce mécanisme, Asp 301 est supposé prendre le proton de l'intermédiaire pentavalent. Ensuite, le proton est évacué du site actif avec l'assistance de His 254 et Asp 233. Nous ne pensons pas que ceci pourrait se produire pour la PTE de S. solfataricus, car le résidu correspondant à His 254 est une arginine. Cette arginine interagit avec Asp256 via son NE, ce qui rend plus difficile un éventuel transfert de proton dans le mécanisme de la PTE de S. solfataricus. Ce nouveau mécanisme est en fait général pour toutes les PTEs caractérisées. Certains indices contredisent en effet le mécanisme de Aubert et al. La PTE d'A. radiobacter est une enzyme très active et possède elle aussi une arginine à cette position. De plus, des travaux de mutagenèse réalisés sur la PTE de P. diminuta confirment notre hypothèse. Les mutations H254R et H254G ne montrent pas d'effets drastiques sur les paramètres catalytiques de l'enzyme (Grimsley et al., 2005; Hill et al., 2003). D'autres incohérences peuvent également être notées. Dans la PTE de P. diminuta, Asp 301 est en très proche interaction avec le métal a. Ceci implique, pour des considérations électrostatiques, que ce résidu chargé négativement ne doit pas être protoné. En outre, les deux azotes de l'imidazole de His 254 sont en liaisons hydrogènes avec des résidus chargés négativement (Asp 301 et Asp 233). Ceci doit avoir pour effet d'augmenter le pKa de cette histidine, ce qui favorise la forme imidazolium, et suggère que ce résidu n'est pas dans le meilleur environnement pour réaliser la catalyse acide/base proposée dans ce transfert de proton. En conclusion, l'analyse de cette structure a permis de trouver des éléments expliquant l'incroyable thermostabilité de cette enzyme. En outre, l'analyse de cette structure ainsi qu'un important travail bibliographique a permis de proposer un nouveau mécanisme général d'action pour l'ensemble des PTEs. Enfin, toutes ces analyses permettent de conduire à la mise au point rapide de biocatalyseurs selon le protocole décrit ci-après.30 Il) Procédé de préparation de phosphotriestérases hyperthermophiles mutées selon l'invention, dérivées de la PTE hyperthermophile de Sulfolobus solfataricus correspondant à la séquence SEQ ID NO : 3, Afin de préparer le gène synthétique Ssopox de 945 paires de bases (bp) Ssopox codant pour les phosphotriestérases hyperthermophiles mutées selon l'invention, dérivées de la PTE hyperthermophile de Sulfolobus solfataricus correspondant à la séquence SEQ ID NO: 3, et comprenant l'une au moins des quatre mutations suivantes : - substitution de la tyrosine Y en position 97 par un tryptophane W, - substitution de la tyrosine Y en position 99 par une phénylalanine F, - substitution de l'arginine R en position 223 par une histidine H, - substitution de la cystéine C en position 258 par une leucine L, et, le cas échéant, l'une au moins des mutations suivantes : - substitution de la valine V en position 27 par une alanine A, - substitution de la proline P en position 67 par une valine V, - substitution de la thréonine T en position 68 par une sérine S, -substitution de la leucine L en position 72 par une isoleucine I, -substitution de l'aspartate D en position 141 par une thréonine T, -substitution de la glycine G en position 225 par une proline P, -substitution de la leucine L en position 226 par une histidine H, -substitution de la phénylalanine F en position 229 par une sérine S, -substitution du tryptophane W en position 263 par une alanine A, -substitution du tryptophane W en position 278 par une isoleucine 1, 14 oligonucléotides (7 sens et 7 antisens) ont été utilisés. La taille des oligonucléotides étaient d'environ 90 pb, et chaque amorce chevauche la suivante par une région chevauchante de 27 pb. Les séquences oligonucléotidiques en question dans le sens 5'-3' sont les suivantes : 1 for: GA TA TA CA TA TGAGAATACCATTAGTTGGGAAAGATTCAATAGAATCTAAGGACA TAGGATTTACGCTAATTCATGAACATTTAAGAGcTTTTA GCGAAGCG (SEQ ID NO: 18) 2rev:A_ACCTCATTTACAGCGTTTCTGAACTCCTCATCTTCGTTATATAGATGGGCCATT GTTGTCTGACCGCTTCGCTAAAAGCTCTTAAATGTTC (SEQ ID NO: 19) 3for:GAGTTCAGAAACGCTGTAAATGAGGTTAAAAGGGCAATGCAATTTGGAGTAAAG ACTATAGTAGATqtCtCTGTAATGGGAaTtGGTAGGGAC (SEQ ID NO: 20) 4rev: CGTCCCCGCAACTAAATTTATCCCG GTAG CCTTAACCACTTTTTCCATAAATCTG 35 ATGTCCCTACCAATTCCCATTACAGAGACATCTACTAT (SEQ ID NO: 21) 5for:ACCGGGATAAATTTAGTTGCGGGGACGGGGATTTggATATtTATCGACTTACCTT TCTATTTCTTAAATAGGTCAATTGATGAGATAGCTGAC (SEQ ID NO: 22) 6rev:TATCTTTACGAA000AG CTTTATTGAGAGTACCTTGTATTCCCTCTTTTATATCAT GAATAAACAAGTCAGCTATCTCATCAATTGACCTATT (SEQ ID NO: 23) 7for:CTCAATAAAGCTGGCTTCGTAAAGATAGCTGCAacTGAACCTGGGATCACAAAG GATGTGGAGAAGGTAATAAGGGCTGCTGCCATAGCAAAC (SEQ ID NO: 24) 8rev:TTGCTGTTCTAATCCGGTGTTATTGTGAGCGTTAGAGTGGGTAATTATTGGTACT TTAGTCTCTTTGTTTGCTATGGCAGCAGCCCTTATTAC (SEQ ID NO: 25) 9for: CACAATAACACCGGATTAGAACAGCAAAGAATATTGACTGAAGAAGGTGTTGAT 10 CCAGGGAAAATATTAATAGGTCATTTAGGTGATACAGAT (SEQ ID NO: 26) 10rev:AggAaAatgATCTAATCCAATAAAGGATCCCTTATCTGCTATCTTCTTTATGTAAT CTATATTATCTGTATCACCTAAATGACCTATTAA (SEQ ID NO: 27) 11 for:TCCTTTATTGGATTAGATcatTtTccTcatGATTTATcCCTACCTGTTGATAAGAGAA ATGAAACGACCTTAAGACTAATCAAAGATGGTTATTCAGAT (SEQ ID NO: 28) 15 12rev: tttatattctggttttqcaqttccagcgtcGAatgtgcataAataatcgtgagagatcattatcttatctqaat aaccatct ttgattagtct (SEQ ID NO: 29) 13fo r: q ctG GAACTG CAAAAC CAGAATATAAAC CTAAG CTT G CTCCAAGAattAGTATAAC TCTAATATTTGAGGATACGATACCGTTCTTAAAGAGA (SEQ ID NO: 30) 14rev: CAACCC GAA TTCTTAGCTGAAGAACTTTTTCGGATTTTCCTTAAATATTGTAGCT 20 ATAACCTCTTCATTCATTCACTCCATTTCTCTTTAAGAACGGTATCGTATCCTC(SEQ ID NO: 31) Les nucléotides choisis pour effectuer les mutations dans la protéine sont indiqués en gras et les régions chevauchantes sont soulignées. Les oligonucléotides 1 for et 14rev ont également été :25 construits de manière à insérer les sites de restriction Ndel et EcoRI respectivement aux séquences N-terminale et C-terminale du gène. Les oligonucléotides ont été purifiés par électrophorèse sur gel d'acrylamide (10%) selon la méthode décrite dans Sambrook (Sambrook J. and Russell D. W. 2001 "Molecular Cloning: a laboratory manual"). 30 La méthode de reconstruction du gène comprend essentiellement 4 étapes. Dans la première étape, des couples successifs d'oligonucléotides (par exemple 1for avec 2rev) sont mélangés (à une concentration finale de 200nM) dans un tube PCR avec un tampon polymérase 1X DeepVent (NEI3), 6mM MgSO4, 200uM dNTP et lU de Polymérase DeepVent, et placés dans un appareillage à cycle thermique afin d'obtenir des fragments d'environ 160 pb (cycle : 10 min à 95 C, 1 min à 35 68 C, 10 min à 72 C). Les fragments obtenus sont mélangés (à une concentration de 20nM), puis digérés par la DnaseI (0,0013U; 30s-1.5min à température ambiante. La réaction Dnasel est stoppée par inactivation theimique à 95 C pendant 10 minutes. La troisième étape, ou étape d'assemblage, est un PCR (1min 95 C, 30sec 50 C, 30sec 72 C, 55 fois) afin de combiner les fragments obtenus après digestion par la Dnasel et reconstruire le gène Ssopox entier., sans addition d'oligos externes. Dans la dernière étape, ou étape d'amplification, les oligonucléotides externes (5' sens et 3' antisens ssopox; Merone et al., 2005) sont additionnés au mélange, à une concentration finale de 1 M, afin d'amplifier le gène entier (cycle PCR : 1min à 95 C, 30sec à 50 C, 30sec à 72 C). Un fragment d'environ 950 pb est détectable par passage d'un aliquote sur gel d'agarose 1%. L'ADN est purifié et cloné dans un plasmide pour séquençage. BIBLIOGRAPHIE AUBERT SD., LI Y., RAUSHEL FM. 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Sequence and structure determinants of the nonenzymatic deamidation of asparagine and glutamine residues in proteins. Protein Eng. 1991, 4 : 283-94.5 REVENDICATIONS 1. Phosphotriestérases (PTE) hyperthermophiles mutées dérivées des PTE hyperthermophiles répondant à la séquence consensus SEQ ID NO : 1, et comprenant l'une au moins des quatre 5 mutations suivantes : substitution de la tyrosine Y en position 98, - substitution de la tyrosine Y en position 100, - substitution de l'arginine R en position 224, - substitution de la cystéine C en position 259, 10 de SEQ ID NO : 1 par tout autre aminoacide naturel ou non. 2. Phosphotriestérases hyperthermophiles mutées selon la revendication 1, dérivées de la PTE hyperthermophile de Sulfolobus solfataricus correspondant à la séquence SEQ ID NO : 3, ou de la PTE hyperthermophile de Sulfolobus acidocaldarius correspondant à la séquence SEQ ID NO : 5, 15 lesdites séquences SEQ ID NO : 3 et SEQ ID NO : 5 appartenant à la séquence consensus SEQ ID NO : 1, l'aminoacide en position 2 dans SEQ ID NO : 1 étant manquant dans SEQ ID NO : 3. 3. Phosphotriestérases hyperthermophiles mutées selon la revendication 1 ou 2, comprenant au moins les quatre mutations suivantes : 20 -substitution de la tyrosine Y en position 98, - substitution de la tyrosine Y en position 100, - substitution de l'arginine R en position 224, - substitution de la cystéine C en position 259, de SEQ ID NO : 1 par tout autre aminoacide naturel ou non. 25 4. Phosphotriestérases hyperthermophiles mutées selon l'une des revendications 1 à 3, caractérisées en ce qu'elles comprennent également l'une au moins des mutations suivantes : - substitution de la valine V en position 28, - substitution de la proline P en position 68, 30 -substitution de la thréonine T en position 69, - substitution de la leucine L en position 73, - substitution de l'aspartate D en position 142, - substitution de la glycine G en position 226, - substitution de la leucine L en position 227,- substitution de la phénylalanine F en position 230, - substitution du tryptophane W en position 264, - substitution du tryptophane W en position 279, de SEQ ID NO : 1 par tout autre aminoacide naturel ou non. 5. Phosphotriestérases hyperthermophiles mutées selon l'une des revendications 1 à 4, caractérisées en ce qu'elles comprennent les cinq mutations suivantes : - substitution de la valine V en position 28, -substitution de la leucine L en position 73, - substitution de l'aspartate D en position 142, - substitution de la glycine G en position 226, -substitution de la leucine L en position 227, de SEC) ID NO : 1 par tout autre aminoacide naturel ou non. 6. Phosphotriestérases hyperthermophiles mutées selon l'une des revendications 1 à 5, caractérisées en ce qu'elles comprennent les cinq mutations suivantes : - substitution de la proline P en position 68, -substitution de la thréonine T en position 69, - substitution de la phénylalanine F en position 230, - substitution du tryptophane W en position 264, - substitution du tryptophane W en position 279, de SEQ ID NO : 1 par tout autre aminoacide naturel ou non. 7. Phosphotriestérases hyperthermophiles mutées selon l'une des revendications 1 à 4, dérivées des PTE hyperthermophiles répondant à la séquence consensus SEQ ID NO: 1, caractérisées en ce qu'elles comprennent l'une au moins des quatre mutations suivantes : - substitution de la tyrosine Y en position 98 par un tryptophane W, - substitution de la tyrosine Y en position 100 par une phénylalanine F, - substitution de l'arginine R en position 224 par une histidine H, - substitution de la cystéine C en position 259 par une leucine L, et, le cas échéant, l'une au moins des mutations suivantes : - substitution de la valine V en position 28 par une alanine A, - substitution de la proline P en position 68 par une valine V, - substitution de la thréonine T en position 69 par une sérine S,- substitution de la leucine L en position 73 par une isoleucine I, - substitution de l'aspartate D en position 142 par une thréonine T, -substitution de la glycine G en position 226 par une proline P, -substitution de la leucine L en position 227 par une histidine H, -substitution de la phénylalanine F en position 230 par une sérine S, -substitution du tryptophane W en position 264 par une alanine A, -substitution du tryptophane W en position 279 par une isoleucine I. 8. Phosphotriestérases hyperthermophiles mutées selon l'une des revendications 1 à 7, dérivées de la PTE hyperthermophile de Sulfolobus solfataricus correspondant à la séquence SEQ ID NO : 3, et comprenant l'une au moins des quatre mutations suivantes : - substitution de la tyrosine Y en position 97, - substitution de la tyrosine Y en position 99, - substitution de l'arginine R en position 223, - substitution de la cystéine C en position 258, de SEQ ID NO : 3 par tout autre aminoacide naturel ou non. 9. Phosphotriestérases hyperthermophiles mutées selon la revendication 8, comprenant au moins les quatre mutations suivantes : substitution de la tyrosine Y en position 97, - substitution de la tyrosine Y en position 99, substitution de l'arginine R en position 223, - substitution de la cystéine C en position 258, de SEQ ID NO : 3 par tout autre aminoacide naturel ou non. 25 10. Phosphotriestérases hyperthermophiles mutées selon la revendication 8 ou 9, caractérisées en ce qu'elles comprennent également l'une au moins des mutations suivantes : - substitution de la valine V en position 27, -substitution de la proline P en position 67, 30 - substitution de la thréonine T en position 68, - substitution de la leucine L en position 72, - substitution de l'aspartate D en position 141, substitution de la glycine G en position 225, substitution de la leucine L en position 226, -substitution de la phénylalanine F en position 229, - substitution du tryptophane W en position 263, - substitution du tryptophane W en position 278, de SEQ ID NO : 3 par tout autre aminoacide naturel ou non. 11. Phosphotriestérases hyperthermophiles mutées selon l'une des revendications 8 à 10, caractérisées en ce qu'elles comprennent les cinq mutations suivantes : - substitution de la valine V en position 27, -substitution de la leucine L en position 72, - substitution de l'aspartate D en position 141, - substitution de la glycine G en position 225, -substitution de la leucine L en position 226, de SEQ ID NO : 3 par tout autre aminoacide naturel ou non. 12. Phosphotriestérases hyperthermophiles mutées selon l'une des revendications 8 à 11, caractérisées en ce qu'elles comprennent les cinq mutations suivantes : - substitution de la proline P en position 67, -substitution de la thréonine T en position 68, - substitution de la phénylalanine F en position 229, - substitution du tryptophane W en position 263, - substitution du tryptophane W en position 278, de SEQ ID NO : 3 par tout autre aminoacide naturel ou non. 13. Phosphotriestérases hyperthermophiles mutées selon l'une des revendications 8 à 12, 25 caractérisées en ce qu'elles comprennent l'une au moins des quatre mutations suivantes : - substitution de la tyrosine Y en position 97 par un tryptophane W, - substitution de la tyrosine Y en position 99 par une phénylalanine F, - substitution de l'arginine R en position 223 par une histidine H, - substitution de la cystéine C en position 258 par une leucine L, 30 et, le cas échéant, l'une au moins des mutations suivantes : - substitution de la valine V en position 27 par une alanine A, - substitution de la proline P en position 67 par une valine V, - substitution de la thréonine T en position 68 par une sérine S, -substitution de la leucine L en position 72 par une isoleucine I, 15 20 25 30 - substitution de l'aspartate D en position 141 par une thréonine T, -substitution de la glycine G en position 225 par une proline P, -substitution de la leucine L en position 226 par une histidine H, -substitution de la phénylalanine F en position 229 par une sérine S, -substitution du tryptophane W en position 263 par une alanine A, -substitution du tryptophane W en position 278 par une isoleucine I. 14. Phosphotriestérases hyperthermophiles mutées selon l'une des revendications 8 à 13, caractérisées en ce qu'elles correspondent aux séquences suivantes : - SEQ ID NO : 7 correspondant à la séquence SEQ ID NO : 3 comprenant les quatre mutations suivantes : * substitution de la tyrosine Y en position 97 par un tryptophane W, * substitution de la tyrosine Y en position 99 par une phénylalanine F, * substitution de l'arginine R en position 223 par une histidine H, * substitution de la cystéine C en position 258 par une leucine L, - SEQ ID NO : 9 correspondant à la séquence SEQ ID NO : 7 comprenant en plus les cinq mutations suivantes : * substitution de la valine V en position 27 par une alanine A, * substitution de la leucine L en position 72 par une isoleucine I, * substitution de l'aspartate D en position 141 par une thréonine T, * substitution de la glycine G en position 225 par une proline P, * substitution de la leucine L en position 226 par une histidine H, - SEQ ID NO : 11 correspondant à la séquence SEQ ID NO : 9 comprenant en plus les cinq mutations suivantes : * substitution de la proline P en position 67 par une valine V, * substitution de la thréonine T en position 68 par une sérine S, * substitution de la phénylalanine F en position 229 par une sérine S, * substitution du tryptophane W en position 263 par une alanine A, * substitution du tryptophane W en position 278 par une isoleucine I. 15. Phosphotriestérases hyperthermophiles mutées selon l'une des revendications 8 à 14, caractérisées en ce qu'elles comprennent au moins une mutation correspondant à la substitution de l'un au moins des aminoacides des couples d'aminoacides suivants dont les positions dans SEQ ID NO : 3 sont indiquées ci-après par un autre aminoacide naturel ou non : 2R/314S, 14K/12E,26R/75L), 26R/42E, 33R/42E, 33R/45E, 55R152E, 55R/285E, 74R/121D, 81K/42E, 81K143D, 84K/80E, 109R/113E, 123K/162E, 147K/148D, 151K/148D, 154R/150E, 154R/187E, 154R/188E, 161K/188E, 183R1150E, 183R/187E, 183R/180E, 210K1245D, 215K/214D, 223R/256D, 223R/202D, 234K/204D, 235R/202D, 241R/245D, 245D/244K, 250K/249D, 277R/286D, 5 2921(1298E, 310K/307E. 16. Phosphotriestérases hyperthermophiles mutées selon l'une des revendications 1 à 7, dérivées de la PTE hyperthermophile de Sulfolobus acidocaldarius correspondant à la séquence SEQ ID NO : 5, et comprenant l'une au moins des quatre mutations suivantes : 10 - substitution de la tyrosine Y en position 98, - substitution de la tyrosine Y en position 100, - substitution de l'arginine R en position 224, - substitution de la cystéine C en position 259, de SEQ ID NO : 5 par tout autre aminoacide naturel ou non. 15 17. Phosphotriestérases hyperthermophiles mutées selon la revendication 16, comprenant au moins les quatre mutations suivantes : - substitution de la tyrosine Y en position 98, - substitution de la tyrosine Y en position 100, 20 - substitution de l'arginine R en position 224, - substitution de la cystéine C en position 259, de SEQ ID NO : 5 par tout autre aminoacide naturel ou non. 18. Phosphotriestérases hyperthermophiles mutées selon la revendication 16 ou 17, 25 caractérisées en ce qu'elles comprennent également l'une au moins des mutations suivantes : - substitution de la valine V en position 28, - substitution de la proline P en position 68, - substitution de la thréonine T en position 69, - substitution de la leucine L en position 73, 30 - substitution de l'aspartate D en position 142, - substitution de la glycine G en position 226, - substitution de la leucine L en position 227, - substitution de la phénylalanine F en position 230, - substitution du tryptophane W en position 264,- substitution du tryptophane W en position 279, de SEQ ID NO : 5 par tout autre aminoacide naturel ou non. 19. Phosphotriestérases hyperthermophiles mutées selon l'une des revendications 16 à 18, 5 caractérisées en ce qu'elles comprennent les cinq mutations suivantes : - substitution de la valine V en position 28, -substitution de la leucine L en position 73, - substitution de l'aspartate D en position 142, - substitution de la glycine G en position 226, 10 -substitution de la leucine L en position 227, de SEQ ID NO : 5 par tout autre aminoacide naturel ou non. 20. Phosphotriestérases hyperthermophiles mutées selon l'une des revendications 16 à 19, caractérisées en ce qu'elles comprennent les cinq mutations suivantes : 15 - substitution de la proline P en position 68, -substitution de la thréonine T en position 69, - substitution de la phénylalanine F en position 230, - substitution du tryptophane W en position 264, - substitution du tryptophane W en position 279, 20 de SEQ ID NO : 5 par tout autre aminoacide naturel ou non. 21. Phosphotriestérases hypertheilliophiles mutées selon l'une des revendications 16 à 20, caractérisées en ce qu'elles comprennent l'une au moins des quatre mutations suivantes : - substitution de la tyrosine Y en position 98 par un tryptophane W, 25 - substitution de la tyrosine Y en position 100 par une phénylalanine F, - substitution de l'arginine R en position 224 par une histidine H, - substitution de la cystéine C en position 259 par une leucine L, et, le cas échéant, l'une au moins des mutations suivantes : - substitution de la valine V en position 28 par une alanine A, 30 - substitution de la proline P en position 68 par une valine V, - substitution de la thréonine T en position 69 par une sérine S, -substitution de la leucine L en position 73 par une isoleucine -substitution de l'aspartate D en position 142 par une thréonine T, -substitution de la glycine G en position 226 par une proline P,-substitution de la leucine L en position 227 par une histidine H, -substitution de la phénylalanine F en position 230 par une sérine S, -substitution du tryptophane W en position 264 par une alanine A, -substitution du tryptophane W en position 279 par une isoleucine I. 22. Phosphotriestérases hyperthermophiles mutées selon l'une des revendications 16 à 21, caractérisées en ce qu'elles correspondent aux séquences suivantes : - SEQ ID NO : 13 correspondant à la séquence SEQ ID NO : 5 comprenant les quatre mutations suivantes * substitution de la tyrosine Y en position 98 par un tryptophane W, * substitution de la tyrosine Y en position 100 par une phénylalanine F, * substitution de l'arginine R en position 224 par une histidine H, * substitution de la cystéine C en position 259 par une leucine L, - SEQ ID NO : 15 correspondant à la séquence SEQ ID NO : 13 comprenant en plus les cinq l5 mutations suivantes : * substitution de la valine V en position 28 par une alanine A, * substitution de la leucine L en position 73 par une isoleucine I, * substitution de l'aspartate D en position 142 par une thréonine T, * substitution de la glycine G en position 226 par une proline P, * substitution de la leucine L en position 227 par une histidine H, - SEQ ID NO : 17 correspondant à la séquence SEQ ID NO : 15 comprenant en plus les cinq mutations suivantes : * substitution de la proline P en position 68 par une valine V, * substitution de la thréonine T en position 69 par une sérine S, * substitution de la phénylalanine F en position 230 par une sérine S, * substitution du tryptophane W en position 264 par une alanine A, * substitution du tryptophane W en position 279 par une isoleucine I. 23. Séquences nucléotidiques codant pour les phosphotriestérases hyperthermophiles mutées 30 telles que définies dans l'une des revendications 1 à 22. 24. Vecteurs, notamment plasmides, contenant des séquences nucléotidiques codant pour les phosphotriestérases hyperthermophiles mutées telles que définies dans la revendication 23. 10 20 2,5 25. Cellules hôtes, notamment bactéries, transformées à l'aide d'un vecteur tel que défini ci-dans la revendication 24. 26. Utilisation de phosphotriestérases hyperthermophiles mutées selon l'une des revendications 1 à 23, ou de cellules hôtes selon la revendication 25, en tant que bio-épurateurs dans le cadre de la décontamination des surfaces des matériaux, de la peau, ou des muqueuses, contaminés par des composés organophosphorés, ou dans le cadre de la préparation de médicaments utilisables dans le cadre de la prévention ou du traitement d'une contamination externe ou d'une intoxication interne par ingestion ou inhalation par des composés organophosphorés, ou dans le cadre de la dépollution des eaux polluées par des composés organophosphorés, ou dans le cadre de la destruction des stocks de neurotoxiques. 27. Matériaux imprégnés de phosphotriestérases hyperthermophiles mutées selon l'une des revendications 1 à 23, sous forme liquide ou solide, tels que gants, vêtements divers, lingettes, mousses pulvérisables. 28. Kits pour la décontamination des surfaces des matériaux, de la peau, ou des muqueuses, contaminés par des composés organophosphorés, ou pour la dépollution des eaux polluées par des composés organophosphorés, caractérisés en ce qu'ils comprennent des phosphotriestérases hyperthermophiles mutées telles que définies dans l'une des revendications 1 à 23, ou des matériaux imprégnés de phosphotriestérases hyperthermophiles mutées selon la revendication 27. 29. Capteurs des composés organophosphorés comprenant des phosphotriestérases hyperthermophiles mutées telles que définies dans l'une des revendications 1 à 23. 30. Cartouches de décontamination externe, à l'intérieur desquelles sont greffées des phosphotriestérases hyperthermophiles mutées telles que définies dans l'une des revendications 1 à 23. 30 31. Composition pharmaceutique caractérisée en ce qu'elle comprend des phosphotriestérases hyperthermophiles mutées selon l'une des revendications 1 à 23, en association avec un véhicule pharmaceutiquement acceptable.25 32. Composition pharmaceutique selon la revendication 31, caractérisée en ce qu'elle se présente sous une forme administrable par voie injectable, ou par voie topique, notamment sous forme de pommade.