Brevet FR2891462A1 — publié le 20070406

EPITOPES T CD4+ DE LA SURVIVINE ET LEURS APPLICATIONS La présente Invention est relative à des peptides représentant des épitopes T CD4+ de la survivine aptes à être présentés par des molécules HLA II prépondérantes, notamment dans la population caucasienne, et à leurs applications vaccinales et diagnostiques. Les antigènes tumoraux regroupent un ensemble de protéines exprimées par les cellules tumorales et que les cellules saines n'expriment peu ou pas, ou qui ne sont retrouvées que dans quelques types cellulaires. Ces antigènes sont classés en cinq catégories en fonction de leur profil d'expression: (1) les antigènes spécifiques du patient, résultant de mutations ponctuelles liées à la tumorigénèse (MUM-1, CDK4, béta-caténine, HLA-A2, BCR-ABL, CASP-8), (2) les antigènes spécifiques de tumeurs ou antigènes CT (Cancer Testis), exprimés dans de nombreuses tumeurs et quelques tissus sains dépourvus de molécules HLA conventionnelles (testicules, placenta, ovaires; antigènes MAGE, BAGE, GAGE, RAGE, NY-ESOI) , (3) les antigènes de différenciation qui s'expriment soit au cours de l'embryogénèse, soit dans des types cellulaires bien particuliers (tyrosinases, gp-100, Melan-A/mart-1, thyroglobuline, alpha-foetoprotéine, CEA), (4) les antigènes surexprimés par les tumeurs (survivine, gp75, PSA, HER-2/neu, p53, télomérase) et (5) les antigènes viraux (EBV, HPV). Toutes ces protéines qui peuvent être reconnues par des lymphocytes T CD4+ et CD8+ et servir à l'induction d'une immunité anti-tumorale représentent des cibles pour la vaccination anti-tumorale. Les cibles qui ont été particulièrement bien étudiées sont principalement des antigènes spécifiques de tumeurs (MAGE, NY-ESO-1). Toutefois, ces antigènes peuvent être des cibles inefficaces pour la vaccination antitumorale, dans la mesure où la plupart ne sont pas essentiels à la survie des cellules tumorales qui peuvent échapper à la surveillance immunologique en diminuant ou en réprimant l'expression de ces antigènes. La survivine (16,5 kDa), également dénommée BIRCS (Baculoviral IAP repeatcontaining protein 5), IAP4 (Inhibitor of Apoptosis Protein 4) ou API4 (Apoptosis Inhibitor 4) est le membre le plus petit de la famille des inhibiteurs de l'apoptose (IAP); elle contient un motif à doigt de zinc de 70 acides aminés (domaine BIR pour Baculovirus Inhibitor of Apoptosis Protein Repeat), caractéristique de tous les membres de la famille IAP et une extrémité C-terminale comprenant une hélice alpha coiled-coil. Le gène codant pour la survivine est localisé sur le chromosome 17 humain (17q25) ou 11 murin (11 E2) ; l'épissage alternatif d'un pré-mRNA compre- nant les exons 1, 2, 2B, 3 et 4 produit trois transcrits: (1) un transcrit comprenant les exons 1, 2, 3 et 4, codant pour l'isoforme alpha de la survivine (142 acides aminés GenBank AAC51660 ou SwissProt 015392), (2) un transcrit comprenant les exons 1, 2, 2B, 3 et 4, codant pour l'isoforme béta ou survivine-2B (165 acides aminés) qui résulte de l'insertion de la séquence IGPGTVAYACNTSTLGGRGGRITR (23 acides aminés, SEQ ID NO: 40), entre les positions 74 et 75 de la séquence de l'isoforme alpha et (3) un transcrit comprenant les exons 1, 2, et 4, codant pour la survivine AEx-3. La survivine est surexprimée dans la majorité des tumeurs, notamment dans celles associées aux cancers du sein, foie, colon, poumon, ovaire, utérus, oesophage, estomac, pancréas, foie et prostate, à la maladie de Hodgkin, au syndrome myélodisplasique avec anémie réfractaire, aux mélanomes, lymphomes non hodgkiniens, leucémies, neuroblastomes, phéochromocytomes, sarcomes des tissus mous et tumeurs cérébrales. La surexpression de cette protéine non-redondante entraîne une insensibilité à l'apoptose et favorise la division cellulaire. En outre, cette surexpression de la survivine est essentielle à la survie des cellules tumorales; l'extinction de l'expression de la survivine dans des lignées de cellules tumorales humaines par des méthodes antisens, ou des mutants dominants négatifs de la survivine résulte en l'arrêt de la division cellulaire et l'apoptose (Yang et al., P.N.A.S., 2004, 101, 15100-15105; Altieri et al., Oncogene, 2003, 22, 8581-8589). Cet antigène tumoral est un bon indicateur du pronostic du cancer; un taux élevé de survivine (ARNm) est corrélé avec un pronostic défavorable (Takeuchi et al., Int. J. Cancer, 2005; Rodel et al., Cancer Res., 2005, 65, 4881-4887; Muzio et al., Cancer Lett., 2005, 225, 27-33; Kim et al., Cancer Lett., 2005, 224, 253-261). En revanche, la survivine est pratiquement indétectable dans les tissus normaux différenciés. Elle possède une durée de vie très courte et est présente uniquement pendant la mitose où elle participe à la formation du complexe CPPs (Chromosomal Passenger Proteins) qui comprend la kinase Aurora B, la protéine INCENP (Inner Centromere Protein) et TD60 (Telophase Disk Antigen), et est égale-ment impliquée dans l'inhibition de l'apoptose en réprimant l'activité des caspases 3, 7, 9 (Schimmer, A.D. , Cancer Research, 2004, 64, 7183-7190). L'étude de la réponse immune dirigée contre la survivine, chez des individus atteints de cancer, indique que cet antigène tumoral peut induire une réponse cellulaire impliquant des lymphocytes T CD4+ et T CD8+ spécifiques (Andersen et al., Cancer Research, 2001, 61, 869-872 et 59645968; Schmidt et al., Blood, 2003, 102, 571-576; Casati et al., Cancer Research, 2003, 63, 4507-4515; Ichiki et al., Lung Cancer, 2005, 48, 281289). Des anticorps spécifiques sont également détectés; le taux élevé d'anticorps anti-survivine détecté dans des cas de cancer de pronostic défavorable indique toutefois que la réponse humorale ne semble pas impliquée dans le rejet des tumeurs exprimant la survivine (Ichiki et al., précité). En conséquence, la survivine représente une cible particulièrement intéressante pour la vaccination anti-tumorale du fait qu'elle induit une réponse T CD4+ et CD8+ spécifique des tumeurs, qu'elle est exprimée dans la plupart des tumeurs et que son expression est essentielle à la survie des tumeurs. En effet, l'utilisation d'un antigène essentiel à la survie des tumeurs, comme cible pour la vaccination anti-tumorale permet d'éviter les problèmes d'échappement des tumeurs à la reconnaissance par le système immunitaire. En outre, la plupart des cancers peuvent être traités avec un seul vaccin, du fait que la survivine est exprimée dans la majorité des tumeurs. Ainsi, il a été proposé d'utiliser la survivine (protéine recombinante), un vecteur d'expression de cet antigène ou des cellules dendritiques transfectées par un tel vecteur d'expression, comme vaccin anti-tumoral (Demande Internationale PCT WO 00/03693; Pisarev et al., Clin., Cancer Res., 2003, 9, 6523-6533; Siegel et al., J. Immunol., 2003, 170, 53915397; Schaft et al., J. Immunol., 2005, 174, 3087-3097). Toutefois, pour induire à la fois une réponse T CD4+ et une réponse T CD8+ efficaces contre un antigène, il est préférable d'utiliser des peptides représentant les épitopes T CD4+ et T CD8+ de cet antigène, plutôt que la protéine entière. Des épitopes T CD8+ de la survivine restreints aux molécules HLAAl, A2, A3, Al 1, A24, B7, B8, B15, B35 du complexe majeur d'histocompatibilité de classe I, (molécules HLA I ou Human Leucocyte Antigen class I) ont été identifiés (peptides 95-104 et 96-104 restreints à HLA-A2 (Andersen et al. , Cancer Res., 2001, 61, 869-872; Schmitz et al., Cancer Res., 2000, 60, 4845-4849; Schmidt et al., 2003, précité ; htt É ://www.cancerirnmunit.or eÉtidedatabase/tumorsÉecific.htm; _/É Demande Internationale PCT WO 2004/067023) ; peptide survivine 2B 80-88 restreint à HLA-A24 (Hirohashi et al., Clin. Cancer Res., 2002, 8, 1731-1739) ; Recker et al., Int. J. Cancer 2004, 108, 937-941 et Cancer Biol. Ther., 2004, 3, 173-179; Bachinsky et al., Cancer Immun., 2005, 5, 6). Des cellules dendritiques autologues chargées avec le peptide 96-104 ont été utilisées pour vacciner des patients atteints de mélanome (Andersen et al., Vaccine, 2005, 23, 884-889). Toutefois, l'immunisation avec des épitopes T CD8+ seuls, induit des lymphocytes T cytotoxiques spécifiques de l'antigène tumoral, avec une fréquence très faible (de l'ordre de 10-4 à 10-7 des cellules CD8+ ; Zhang et al., Eur. J. Immunol., 2005, 35, 776-785). En effet, l'induction de lymphocytes T cytotoxiques (CTL) est dépendante de l'activation des lymphocytes T CD4+ qui interviennent en particulier dans le recrutement et le maintien des CTL. Il a été montré que les lymphocytes T CD4+ jouent un rôle essentiel dans le contrôle des tumeurs. Par l'intermédiaire de contacts cellulaires et la sécrétion de nombreuses cytokines, les lymphocytes T CD4+ induisent l'activation des cellules présentatrices d'antigène (APC pour Antigen Presenting Cell) qui à leur tour recrutent des lymphocytes T CD8+ spécifiques des tumeurs. Ils interviennent également dans la maturation des cellules effectrices que sont les lymphocytes T cytotoxiques. En outre, les résultats observés chez des souris n'exprimant pas de molécules du complexe majeur d'histocompatibilité de classe I, indiquent également que les lymphocytes T CD4+ exercent un contrôle des tumeurs via des mécanismes indépendants des CTL probablement via l'activation de macrophages. Enfin, les Iymphocytes T CD4+ peuvent être eux-mêmes cytotoxiques. Les lymphocytes T CD4+ reconnaissent les peptides de tumeurs que leur présentent les molécules du complexe majeur d'histocompatibilité de classe Il; chez l'homme, elles sont dénommées molécules HLA Il pour Human Leucocyte Antigen class H. La reconnaissance peut avoir lieu de manière directe (c'est-à-dire que la tumeur présente elle-même ces peptides aux lymphocytes T) mais il est vraisemblable que la voie principale d'activation se fasse par l'intermédiaire des cellules dendritiques. Ces cellules sont en effet les principales cellules présentatrices de l'antigène aptes à recruter in vivo les lymphocytes T naïfs. Ces peptides anti-géniques, appelés épitopes T, résultent de la dégradation protéolytique des antigènes par les cellules présentatrices d'antigène. Ils ont des longueurs variables, généralement de 13 à 25 acides aminés et possèdent une séquence qui les rend capables de se lier aux molécules HLA II. Il est bien connu qu'au même titre que l'antigène natif, un peptide comprenant un épitope T CD4+ est capable de stimuler in vitro des cellules T CD4+ qui lui sont spécifiques ou de les recruter in vivo. Il est donc suffisant pour induire une réponse T CD4+. Ces observations sont en faveur de l'utilisation de tels peptides antigéniques spécifiques de la survivine, et capables de stimuler une forte réponse T CD4+, pour la préparation d'une composition vaccinale anti-tumorale chez l'Homme, notamment en association avec des épitopes T CD8+ spécifiques du même antigène. En outre, de tels peptides qui sont reconnus par des lymphocytes T CD4+ spécifiques d'un antigène tumoral sont également utiles comme réactifs dans un test de diagnostic, d'évaluation du pronostic ou de suivi du traitement d'un cancer chez l'Homme, reposant sur la détection desdites cellules T CD4+, soit de manière directe, notamment par cytométrie de flux en présence de multimères de complexes molécules de classe II/peptide, soit de manière indirecte, notamment par un test de prolifération lymphocytaire, ou bien un dosage d'anticorps ou de cytokines. Toutefois, aucun épitope T CD4+ de la survivine n'a été identifié. En effet, un des problèmes majeurs qui limite l'utilisation de ces peptides comme antigène est l'identification des épitopes T CD4+, étant donné que leur séquence varie d'un individu à l'autre en raison du polymorphisme des molécules HLA II. Les molécules HLA II sont des hétérodimères constitués d'une chaîne alpha (a) et d'une chaîne béta (13) polymorphes. Il existe quatre types de molécules HLA II par individu (2 HLA-DR, 1 HLA- DQ et 1 HLA-DP), dénommées en fonction de l'allèle codant la chaîne béta qui est la plus polymorphe. La molécule HLA-DR est très polymorphe. En effet, alors que sa chaîne alpha ne compte que 3 allèles, la chaîne béta (l) codée par le gène DRB1, qui est la plus exprimée, compte à ce jour 458 allèles. Pour les molécules HLA-DQ et HLA-DP, les deux chaînes (a et (3) qui les constituent sont polymorphes mais elles présentent moins d'allèles. On a dénombré 28 allèles DQA 1 (chaîne a de HLA-DQ), 60 allèles DQB1 (chaîne 13 de HLA-DQ), 22 allèles DPA1 (chaîne a de HLA-DP) et 116 allèles DPBI (chaîne f3 de HLA-DP). Cependant, la combinaison entre les deux chaînes a et f3 codées par ces allèles donne naissance à de nombreuses molécules HLA-DQ et HLA-DP. Du fait de ce polymorphisme, ces isofoinies possèdent des proprié-tés de liaison différentes entre elles, ce qui implique qu'elles peuvent lier des peptides différents d'un même antigène. Ainsi, le mode de liaison des peptides aux molécules HLA II est plus complexe que celui des molécules HLA I et il n'existe pas de programmes fiables de prédiction des peptides capables de se lier aux molécules HLA II. En effet, les molécules HLA possèdent une structure tridimensionnelle très proche mais le site de fixation des molécules HLA II est une gorge ouverte aux deux extrémités. Pour cette raison, les peptides restreints aux molécules HLA II acceptent des peptides de taille variable, généralement comprise entre 13 et 25 acides aminés. Cette gorge est caractérisée par cinq poches de spécificité (PI, P4, P6, P7 et P9 correspondant aux positions des résidus du peptide qu'elles accommodent) qui abritent des résidus polymorphes. Comme les différences de séquences entre les différentes molécules HLA II sont essentiellement localisées dans les poches du site de fixation des peptides, elles interviennent directement dans le répertoire de peptides qui se lient à chaque molécule. Ainsi, chaque individu reconnaît dans un antigène un ensemble de peptides dont la nature dépend des molécules HLA II qui le caractérisent. Comme il existe un grand nombre d'allèles HLA II, il existe donc dans une séquence donnée un répertoire important d'épitopes T de séquences très différentes, chacun spécifique d'un allèle différent. Un peptide capable de stimuler une réponse T CD4+ spécifique d'un antigène tumoral chez quelques individus peut donc être inactif chez la majorité des autres individus, parce que ces derniers ne reconnaissent pas l'antigène tumoral par les mêmes épitopes. Toutefois, les molécules HLA II ne semblent pas être utilisées de manière uniforme, pour la reconnaissance des tumeurs. En effet, les épitopes T issus d'antigènes tumoraux sont pour la plupart restreints aux molécules HLA-DR, suggé- rant que les molécules HLA-DQ ne sont apparemment que faiblement utilisées pour la reconnaissance des tumeurs. En outre, les allèles HLA II ne sont pas répartis dans le monde de manière uniforme. Ainsi dix molécules HLA-DR sont prépondérantes en Europe et aux Etats-Unis et couvrent l'essentiel de la population; il s'agit des molécules dont la chaîne béta est codée par les sept allèles du locus HLA-DRBI: *0101, *0301, *0401, *0701, *1101, *1301, *1501, et les allèles DRB3*0101, DRB4*0101 et DRB5*0101 (Tableau I). Tableau I: Fréquence génique (allélique*)/phénotypique d'HLA II Europe USA Afrique Asie Allèles Afro- France Allemagne Caucasien américain Sénégal Inde Japon DRBI*0101 9,3/17,7 6,7/13 7,3/14,1 1,9/3,8 0,6/1,2 3, 8/7,5 4,9/9,6 DRBI*0401 5,6/10,9 8,1/15,5 6,7/13 1,5/3,0 0/0 0,9/1,8 0/0 DRBI*1101 9,2/17,6 9,2/17,6 4,4/8,6 8,2/15,7 9,3/17,7 0,9/1,8 2/4 DRBI*0701 14,0/26 12,3/23,1 14,4/26,7 9,8/18,6 7,8/15 13124,3 0,6/1,2 DRBI*0301 10,9/20,6 9,4/17,9 9,5/18,1 7/13,5 10,2/19,4 5,3110,3 0,4/0,8 DRBI*1301 6,0/11,6 4,5/8,8 5,1/9,9 4,2/8,2 4,7/9,2 6,3112,2 0,7/1,4 DRBI*1501 8,0/14,4 7,8/15 10,3/19,5 8,6/16,5 0/0 12,1/22,7 9,1/17,4 TOTAL 63,0/86,3 58,0/82,4 57,7/82,1 41,2/65,4 32,/54,66 42,3/66,7 17,7/32,3 DRB5*0101 7,9/15,2 4,6/9 2,4/4,7 10,4/19,7 0/0 0/0 5,6/10,9 DRB3*0101 9, 2/17,6 9,8118,6 10,4/19,7 15,1/27,9 6,9/13,3 4,9/9,6 6,5/12,6 DRB4*0101 28,0/48,2 21,1/37,7 19,8/35,7 16,5/30,3 6,9/13,3 24,8/43,4 28,9/49,4 TOTAL 45,1/69,9 35,5/58,4 32,6/54,6 42,0/66,4 13,8/25,7 29,7/50,6 41,0/65, 2 DPB1*0101 7,1/13,7 2,2/4,4 3,2/6,3 27,7/47,7 18,2/33,1 nd 0,1/0,2 DPB1*0201 11,91/22,4 8,5/16,3 9,8/18,6 12,9/24,1 13,8/25,7 nd 20,6/37 DPB1*0301 17,0/31,1 3,8/7,5 7,4/14,3 3,3/6,5 3,8/7,5 nd 3/5,9 DPB1*0401 40,0/64 38,1/61,7 25,1/43,9 11/20,8 4,8/9,4 nd 4,7/9,2 DPB1*0402 11,0/20, 8 15,4128,4 12,6/23,6 9/17,2 25,5/44,5 nd 36,8/60,1 TOTAL 87,0/98,3 68, 0/89,8 58,1/82,4 63,9/87,0 66,1/88,5 nd 65,2/87,9 Total 51/76 53,5/78,4 37,7/61,2 20/36,0 30,3/51,4 41,5/65,8 DP401+402 nd * les molécules HLA Il prépondérantes (fréquence génique> 5 %) sont indiquées en gras Par exemple, dans la population française qui est une population caractéristique de la population caucasienne (USA, Europe), seuls les 7 allèles du locus DRBI ont une fréquence allélique supérieure à 5 %; ces 7 allèles DRBI représentent à eux seuls 63 % de la population. Ces mêmes allèles DRB 1 sont les allèles HLA-DR les plus abondants dans les autres populations caucasiennes. Leur fréquence varie entre 53 % (en Espagne) et 82 % (au Danemark). Pour les États-Unis et le Canada, ils représentent respectivement 58 et 55 % des allèles de la population. En outre certains des allèles DRBI, les plus fréquents dans la population caucasienne sont également fréquents dans la population africaine (DRB1 *0301, *0701 et *1101), indienne (DRBI*0301, *0701, *1301 et *1501) et japonaise (DRB 1 *1501) Les molécules HLA-DRB3, -DRB4 et DRB5 qui sont des molécules HLA-DR dont la chaîne fi n'est pas codée par le gène DRB1 sont également prépondérantes en Europe, aux USA et au Japon, car elles sont moins polymorphes que les molécules DRB1 (Tableau I). Par exemple, en France, leur fréquence allélique est de 9,2 % pour DRB3*0101, 28 % pour DRB4*0101 et 7,9 % pour DRB5*0101. Elles couvrent donc à elles seules 45 % de la fréquence allélique en France. De plus, les motifs de liaison de certaines molécules HLA-DR sont identiques si bien qu'un peptide peut se lier à plusieurs molécules HLADR. En outre, il n'est pas rare que les épitopes T CD4+ soient imbriqués les uns dans les autres si bien qu'une séquence peptidique peut contenir plusieurs épitopes T CD4+. Enfin, deux molécules HLA-DP4 (DP401 et DP402) couvrent à elles seules la majorité de la fréquence allélique d'HLA-DP dans la population caucasienne (de l'ordre de 50 % en Europe et 80 % en Amérique du Nord) et sont également présentes à des fréquences non négligeables dans les autres populations (fréquence allélique de l'ordre de 60 % en Amérique du Sud, 60 % en Inde, 30 % en Afrique et 40 % au Japon; Tableau I). Chacune de ces molécules DP4 comprend une chaîne alpha codée, soit par l'allèle DPAI*0103 qui est le plus fréquent (78,2 %), soit par l'allèle DPA1*0201 (20,2 %) et une chaîne béta codée par l'allèle DPB1 *0401 (molécule HLA- DP401) ou DPB1*0402 (molécule HLA-DP402). Comme les molécules HLA-DR, les molécules HLA-DP4 sont parfaitement aptes à présenter des peptides aux lymphocytes T dans la mesure où de nombreux clones T restreints à HLA-DP4 ont été isolés à partir d'antigènes très variés tels que la toxine tétanique, le virus de l'hépatite B et l'allergène majeur de Dermatophagoïdes pteronissimus. Les peptides, qui lient les molécules HLA II codées par les allèles les plus fréquents dans la population (molécules HLA II prépondérantes), incluent donc les épitopes T de la majorité de la population. Les inventeurs ont identifié trois régions de la survivine contenant des épitopes T CD4+ restreints aux 12 molécules HLA II prépondérantes dans la population caucasienne. Ces peptides représentent des candidats potentiels pour la vaccination prophylactique ou thérapeutique contre les cancers, étant donné qu'ils sont susceptibles d'induire une réponse T CD4+ dirigée contre la tumeur, chez la majorité des patients vaccinés, dans la mesure où : (i) ils sont issus d'un antigène exprimé par la majorité des cellules tumorales, (ii) ils sont aptes à induire des lymphocytes T CD4+ spécifiques de cet antigène, et (iii) ils prennent en compte le polymorphisme des molécules HLA II. En outre, ces peptides qui sont reconnus par des lymphocytes T CD4+ spécifiques d'un antigène tumoral exprimé par la majorité des cellules tumorales, sont utiles pour l'établissement du pronostic et le suivi de l'évolution des cancers. La présente invention a en conséquence pour objet un peptide dérivé de l'isoforme alpha de la survivine, apte à être présenté par au moins une molécule HLA II prépondérante dans la population caucasienne et à induire des lymphocytes T CD4+ spécifiques de la survivine, lequel peptide étant sélectionné dans le groupe constitué par: a) les fragments de 13 à 18 acides aminés consécutifs situés entre les positions 17 et 34 de l'isoforme alpha de la survivine, b) les fragments de 13 à 30 acides aminés consécutifs situés entre les positions 84 et 113 de l'isoforme alpha de la survivine, c) les fragments de 13 à 21 acides aminés consécutifs situés entre les positions 122 et 142 de l'isoforme alpha de la survivine, et d) les variants des peptides définis en a), b) ou c) qui présentent une activité de liaison à au moins une molécule HLA-II prépondérante dans la population caucasienne, inférieure à 1000 nM et sont capables d'induire des lymphocytes T 25 CD4+ spécifiques de la survivine, pour une utilisation comme antigène dans la vaccination prophylactique ou thérapeutique, le diagnostic, le pronostic ou le suivi thérapeutique du cancer. Définitions On entend par peptide apte à être présenté par au moins une molé-30 cule HLA II un peptide possédant une activité de liaison à au moins une molécule HLA-II, inférieure à 1000 nM. lo On entend par survivine , les trois isofolmes de la survivine: isoforme alpha, survivine-2B et survivine AEx-3. Ces isoformes peuvent être issues de n'importe quel mammifère; de préférence, il s'agit des isoformes humaines. L'isoforme alpha de la survivine correspond à la survivine de 142 acides aminés; les positions sont indiquées en référence à la séquence humaine (Genbank AAC51660 ou SwissProt 015392). On entend par molécule HLA Il prépondérante dans la population caucasienne ou molécule HLA II prépondérante , une molécule HLA II comprenant une chaîne béta codée par un allèle dont la fréquence est supérieure à 5 % dans la population caucasienne, comme précisé au Tableau I ci-dessus. Certaines des molécules HLA II prépondérantes dans la population caucasienne et notamment les molécules HLA-DP401 et HLA-DP402 sont également prépondérantes dans d'autres populations (Amérique du Sud, Inde, Japon, Afrique; Tableau I). En conséquence, les peptides selon l'invention ne sont pas restreints à une utilisation dans la population caucasienne, et ils peuvent également être utilisés pour vacciner des individus de pays autres que ceux d'Amérique du Nord et d'Europe, dans lesquels lesdites molécules HLA II sont prépondérantes, comme précisé au Tableau 1. On entend par cancer , un cancer associé à la surexpression de la survivine tel que de façon non-limitative: les cancers du sein, foie, colon, poumon, ovaire, utérus, oesophage, estomac, pancréas, foie et prostate, Ies mélanomes, la maladie de Hodgkin, les lymphomes non hodgkiniens, les leucémies, le syndrome myélodisplasique avec anémie réfractaire, les neuroblastomes, les phéochromocytomes, les sarcomes des tissus mous et les tumeurs cérébrales. Les peptides selon I'invention comprennent un épitope T CD4+ de la survivine apte à être présenté à au moins une molécule HLA II prépondérante, lequel épitope est constitué par une séquence de 9 acides aminés incluant les résidus d'ancrage aux molécules HLA II, flanquée à l'une de ses extrémités, de préférence aux deux extrémités, par au moins 2 acides aminés, de préférence 3 acides aminés. Les peptides selon l'invention présentent les propriétés suivantes: activité de liaison aux molécules HLA II: les peptides selon l'invention possèdent une bonne affinité pour les molécules HLA II prépondérantes, notamment dans la population caucasienne (activité de liaison - immunogénicité : Ces peptides sont également capables d'induire des cellules T CD4+ spécifiques de la survivine à partir des précurseurs présents chez la majorité des individus naïfs ou bien de stimuler de telles cellules chez la majorité des individus atteints d'un cancer associé à la surexpression de la survivine. L'immunogénicité des peptides peut être déterminée, notamment à partir de cellules mononucléées du sang périphérique (PBMCs), par tout essai approprié connu de l'Homme du métier comme par exemple: un test de prolifération cellulaire, un test ELISPOT (dosage des cellules productrices de cytokines) ou un test de dosage des cytokines intracellulaires (IFN-y, IL-2, IL-4 et IL-10). L'invention englobe les variants naturels ou synthétiques obtenus par mutation (insertion, délétion, substitution) d'un ou plusieurs acides aminés dans la séquence de l'isoforme alpha de la survivine humaine, dès lors que ledit variant conserve une bonne affinité pour au moins une molécule HLA II prépondérante, notamment dans la population caucasienne (activité de Iiaison L'invention englobe également les peptides modifiés dérivés des précédents par introduction de toute modification au niveau de résidu(s) d'acide aminé, de la liaison peptidique ou des extrémités des peptides, dès lors que ledit peptide modifié conserve une bonne affinité pour au moins une molécule HLA II prépondérante, notamment dans la population caucasienne (activité de liaison Selon un mode de réalisation avantageux dudit peptide, ladite molécule HLA II prépondérante dans la population caucasienne est choisie parmi les molécules HLA-DR1, HLA-DR3, HLA-DR4, HLA-DR7, HLA-DRI1, HLA-DR13, HLADR15, HLA-DRB3, HLA-DRB4, HLA-DRB5 et HLA-DP4, de préférence parmi les molécules HLA-DR1, HLA-DR4, HLA-DR7, HLA-DR11, HLA-DR13, HLA-DR15, HLADRB5, HLA-DP401 et HLA-DP402. Lesdites molécules HLA Il sont avantageusement codées respectivement par les allèles HLA DRBI *0101, DRB1 0301, DRB1 *0401, DRB1*0701, DRBI*1101, DRBI*1301, DRB1*1501, DRB3*0101, DRB4*0101, DRB5*0101, DP*0401 et DP*0402. Parmi ces molécules HLA II prépondérantes dans la population 5 caucasienne, les molécules HLA-DP401 et HLA-DP402 sont également prépondérantes en Amérique du Sud, en Inde, en Afrique et au Japon. De manière particulièrement avantageuse, Iedit peptide est apte à être présenté par au moins une molécule HLA-DP401 ou HLA-DP402. Selon un autre mode de réalisation avantageux dudit peptide, il est apte à être présenté par au moins trois molécules HLA II prépondérantes dans la population caucasienne, de préférence au moins quatre molécules HLA II prépondérantes dans cette population. Selon une disposition avantageuse des modes de réalisation précédents, ledit peptide est sélectionné dans le groupe constitué par les peptides de 15 acides aminés situés entre les positions suivantes de l'isoforme alpha de la survivine: 17à31,19à33,20à34,84à98,90à104,91à105,93à107,96- 110,99 à 113, 122 à 136 et 128-142; ces peptides possèdent une bonne affinité (activité de liaison Ledit peptide est avantageusement sélectionné dans le groupe constitué par les séquences SEQ ID NO: 5, 6, 7, 17, 19, 20, 21, 23, 24, 27 et 28. De préférence, ledit peptide est sélectionné dans le groupe constitué par les peptides: 17-31, 19-33, 20-34, 84-98, 90-104, 91-105, 93-107, 96-110 et 128-142 qui possèdent une bonne affinité (activité de liaison De manière remarquable, l'ensemble des peptides qui possèdent une bonne affinité pour au moins quatre molécules HLA II prépondérantes dans la population caucasienne, à l'exception du peptide 128-142, possèdent également une bonne affinité pour au moins une molécule HLA-DP401 ou HLADP-402. De tels peptides permettent à la fois d'obtenir une bonne couverture vaccinale chez les individus de la population caucasienne et d'élargir la couverture vaccinale aux individus d'autres populations (Amérique du Sud, Afrique, Inde et Japon). De manière préférée, ledit peptide est sélectionné dans le groupe constitué par les peptides: 17-31, 19-33, 90-104, 93-107, 96-110 et 128142. De manière encore plus préférée, ledit peptide est sélectionné dans le groupe constitué par les peptides 19-33, 90-104 et 93-107. Selon un autre mode de réalisation avantageux dudit peptide, il présente une séquence de 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24 ou 25 acides aminés. Selon un autre mode de réalisation avantageux dudit peptide, il s'agit d'un variant d'un des peptides précédents, obtenu par la substitution d'au moins un des résidus P1, P6 et/ou P9 d'ancrage aux molécules HLA II, par un acide aminé aromatique ou hydrophobe, du résidu P6 par une cystéine (C), du résidu P9 par C, D, Q, S, T ou E et/ou du résidu P4 par un autre acide aminé naturel ou synthétique. On entend par acide aminé naturel ou synthétique, les 20 a-acides aminés naturels communément trouvés dans les protéines (A, R, N, D, C, Q, E, G, H, I, L, K, M, F, P, S, T, W, Y et V), certains acides aminés rarement rencontrés dans les protéines (hydroxyproline, hydroxylysine, méthyllysine, diméthyllysine..), les acides aminés qui n'existent pas dans les protéines tels que la (3-alanine, l'acide y-amino- butyrique, l'homocystéine, l'ornithine, la citrulline, la canavanine, la norleucine, la cyclohexylalanine..., ainsi que les énantiomères et les diastéréoisomères des acides aminés précédents. On entend par acide aminé hydrophobe, un acide aminé sélectionné parmi (code à une lettre) : A, V, L, I, P, W, F et M. On entend par acide aminé aromatique, un acide aminé sélectionné parmi (code à une lettre) : F, W et Y. Selon un autre mode de réalisation avantageux dudit peptide, il est marqué ou complexé ; il peut être notamment complexé à des molécules HLA II marquées, par exemple biotinylées, pour former des complexes HLA II/peptides, en particulier des complexes multimériques comme des tétramères. La présente invention a également pour objet un fragment polyépitopique comprenant la concaténation d'au moins deux épitopes identiques ou différents dont l'un au moins est un épitope T CD4+ de la survivine inclus dans un peptide tel que défini ci-dessus, pour une utilisation comme antigène dans la vaccination prophylactique ou thérapeutique, le diagnostic, le pronostic ou le suivi thérapeutique du cancer. De préférence, ledit fragment polyépitopique présente une longueur de 20 à 1000 acides aminés, de préférence de 20 à 100 acides aminés. Ledit fragment polyépitopique comprend avantageusement une étiquette fusionnée à l'une de ses extrémités, pour la purification ou la détection dudit fragment. L'étiquette, notamment une séquence polyhistidine ou un épitope B d'un antigène, est de préférence séparée de la séquence polyépitopique par un site de clivage d'une protéase de façon à isoler la séquence polyépitopique, à partir de la fusion. Selon un mode de réalisation avantageux dudit fragment polyépitopique, il comprend la concaténation d'au moins un épitope T CD4+ de la survivine inclus dans un peptide tel que défini ci-dessus et d'au moins un épitope sélectionné dans le groupe constitué par: - un épitope T CD8+ de la survivine, présenté par une molécules HLA I et reconnu par des lymphocytes T cytotoxiques spécifiques dudits antigène; de tels épitopes T CD8+ sont notamment décrits sur le site http://www.cancerimmunity. org/peptidedatabase/tumorspecific.htm; de préférence I'épitope T CD8+ est choisi parmi: survivine 96-104 (LTLGEFLKL, SEQ ID NO: 37) ou 95-104 (LTLGEFLKL, SEQ ID NO: 38), survivine-2B 80-88 (AYACNTSTL, SEQ ID NO: 39) et les peptides tels que décrits dans le Tableau I deBachinsky et al., Cancer Immun., 2005, 5, 6. - un épitope T CD4+ universel naturel ou synthétique tel que le peptide de la toxine tétanique TT 830-846 (O'SULLIVAN et aI., J. Immunol., 1991, 147, 2663-2669), le peptide de l'hémagglutinine du virus de la grippe HA 307-319 (O'Sullivan et al, précité), le peptide PADRE (KXVAAWTLKAA, SEQ ID NO: 41; Alexander et al., Immunity, 1994, 1, 751-761) et des peptides issus des antigènes de Plasmodium falciparum tels que le peptide CS.T3 (Sinigaglia et al., Nature, 1988, 336, 778-780) et les peptides CSP, SSP2, LSA-1 et EXP-1 (Doolan et al., J. Immunol., 2000, 165, 1123-1137), - un épitope B constitué par un sucre (Alexander et al., précité), ledit épitope B étant de préférence sous la forme d'un glycopeptide, et - un épitope B de la survivine reconnu spécifiquement par des anticorps dirigés contre ledit antigène tumoral. La combinaison de l'épitope T CD4+ avec l'un au moins des épitopes tels que définis ci-dessus permet avantageusement de déclencher ou de moduler une réponse immunitaire anti-tumorale. La présente invention a également pour objet un lipopeptide comprenant un peptide ou un fragment polyépitopique tels que définis ci-dessus, pour une utilisation comme antigène dans la vaccination prophylactique ou thérapeutique, le diagnostic, le pronostic ou le suivi thérapeutique du cancer. Ledit lipopeptide est notamment obtenu par addition d'un lipide sur une fonction a-aminée ou sur une fonction réactive de la chaîne latérale d'un acide aminé dudit peptide ou fragment polyépitopique; il peut comprendre une ou plusieurs chaînes dérivées d'acides gras en C4_20, éventuellement ramifiées ou insaturées (acide palmitique, acide oléique, acide linoléique, acide linolénique, acide 2-amino hexadécanoïque, pimélautide, trimétauxide) ou un dérivé d'un stéroïde. La partie lipidique préférée est notamment représentée par un groupe Na-acétyl-lysine Nc(palmitoyl), également dénommé Ac-K(Pam). La présente invention a également pour objet une protéine de fusion constituée par une protéine ou un fragment de protéine, fusionnés avec un peptide ou un fragment polyépitopique tels que définis ci-dessus, pour une utilisation comme antigène dans la vaccination prophylactique ou thérapeutique, le diagnostic, le pronostic ou le suivi thérapeutique du cancer. Le peptide ou le fragment polyépitopique peuvent être fusionnés avec l'extrémité NH2 ou COOH de ladite protéine ou insérés dans la séquence de ladite protéine. Selon un mode de réalisation avantageux de ladite protéine de fusion, elle est constituée par un peptide tel que défini ci-dessus, fusionné avec une séquence de ciblage dans 1'endosome, dérivée de préférence d'une chaîne invariable humaine Ii ou de la protéine LAMP-1. Les séquences de ciblage dans 1'endosome et leur utilisation pour le ciblage d'antigènes dans 1'endosome sont notamment décrites dans Sanderson et al. (P.N.A.S., 1995, 92, 7217-7222), Wu et al. (P.N.A.S., 1995, 92, 11671-11675) et Thompson et al. (J. Virol., 1998, 72, 2246-2252). Selon un autre mode de réalisation avantageux de ladite protéine de fusion, elle est constituée par un peptide tel que défini ci-dessus, fusionné avec l'une des chaînes d'une molécule HLA II, de préférence la chaîne béta, ou bien avec un fragment de celle-ci correspondant à une molécule HLA II soluble, notamment un fragment correspondant au domaine extracellulaire précédé du peptide signal homologue ou d'un peptide signal hétérologue. Ledit peptide est avantageusement inséré entre le peptide signal et l'extrémité NH2 du domaine extracellulaire de la chaîne p, comme décrit pour la molécule HLA-DR ( Kolzin et al., PNAS, 2000, 97, 291-296). Alternativement, ledit peptide ou ledit fragment polyépitopique sont fusionnés avec une protéine facilitant leur purification ou leur détection, connue de l'Homme du métier comme notamment la Glutathione STransférase (GST) et les protéines fluorescentes (GFP et dérivées). Dans ce cas, la séquence du peptide ou du fragment polyépitopique d'intérêt est de préférence séparée du reste de la protéine par un site de clivage d'une protéase, pour faciliter la purification dudit peptide ou dudit fragment polyépitopique. La présente invention a également pour objet un vecteur d'expression comprenant un polynucléotide codant pour un peptide, un fragment polyépitopique ou une protéine de fusion tels que définis ci-dessus, sous le contrôle de séquences régulatrices appropriées, de la transcription et éventuellement de la traduction, pour une utilisation comme antigène dans la vaccination prophylactique ou thérapeutique, le diagnostic ou le pronostic du cancer. Conformément à l'invention, la séquence dudit polynucléotide est celle de l'ADNc codant pour ledit peptide ou fragment polyépitopique ou ladite protéine de fusion. Ladite séquence peut avantageusement être modifiée de façon à ce que l'usage des codons soit optimal chez l'hôte dans lequel elle est exprimée. En outre, ledit polynucléotide peut être lié à au moins une séquence hétérologue. Au sens de la présente invention, on entend par séquence hétérologue relativement à une séquence d'acide nucléique codant pour la survivine, toute séquence d'acide nucléique autre que celles qui, dans la nature, sont immédiatement adjacentes à ladite séquence d'acide nucléique codant ledit peptide de la survivine. Conformément à l'invention ledit vecteur recombinant comprend une cassette d'expression incluant au moins un polynucléotide tel que défini ci-dessus, sous le contrôle de séquences régulatrices de la transcription et éventuellement de la traduction appropriées (promoteur, activateur, intron, codon d'initiation (ATG), codon stop, signal de polyadénylation), De nombreux vecteurs dans lesquels on peut insérer une molécule d'acide nucléique d'intérêt afin de l'introduire et de la maintenir dans une cellule hôte eucaryote ou procaryote, sont connus en eux-mêmes; le choix d'un vecteur approprié dépend de l'utilisation envisagée pour ce vecteur (par exemple réplication de la séquence d'intérêt, expression de cette séquence, maintien de cette séquence sous forme extrachromosomique, ou bien intégration dans le matériel chromosomique de l'hôte), ainsi que de la nature de la cellule hôte. Par exemple, on peut utiliser entre autres des vecteurs viraux tels que les adénovirus, les rétrovirus, les lentivirus, les AAV et les baculovirus, dans lesquels a été insérée préalablement la séquence d'intérêt; on peut également associer ladite séquence (isolée ou insérée dans un vecteur plasmidique) avec une substance lui permettant de franchir la membrane des cellules hôtes, telle qu'un transporteur comme un nanotransporteur ou une préparation de liposomes, ou de polymères cationiques, ou bien l'introduire dans ladite cellule hôte en utilisant des méthodes physiques telles que l'électroporation ou la microinjection. En outre, on peut avantageusement combiner ces méthodes, par exemple en utilisant I'électroporation associée à des liposomes. La présente invention a également pour objet une composition immunogène ou vaccinale, caractérisée en ce qu'elle comprend au moins un peptide, un fragment polyépitopique, une protéine de fusion, un lipopeptide ou un vecteur tels que définis ci-dessus, et un véhicule pharmaceutiquement acceptable, une substance porteuse ou un adjuvant. La composition immunogène selon l'invention se présente sous une forme galénique adaptée à une administration par voie parentérale (sous-cutanée, intramusculaire, intraveineuse), entérale (orale, sublinguale), ou locale (rectale, vaginale). Les véhicules pharmaceutiquement acceptables, les substances porteuses et Ies adjuvants sont ceux classiquement utilisés. Les adjuvants sont avantageusement choisis dans le groupe constitué par: des émulsions huileuses, des substances minérales, des extraits bactériens, la saponine, l'hydroxyde d'alumine, le monophosphoryl lipide A et le squalène. Les substances porteuses sont avantageusement sélectionnées dans le groupe constitué par: les liposomes unilamellaires ou multilamellaires, les ISCOMS, Ies virosomes, les pseudoparticules virales, les micelles de saponine, les microsphères solides de nature saccharidique (poly(lactideco-glycolide)) ou aurifère, et les nano- particules. Selon un mode de réalisation avantageux de ladite composition, elle comprend au moins un épitope T CD4+ et un épitope T CDS+ de la survivine, sous forme d'un mélange de peptides, d'un fragment polyépitopique et/ou d'un vecteur d'expression codant lesdits peptides ou ledit fragment, tels que définis ci-dessus. Selon une disposition avantageuse de ce mode de réalisation de ladite composition, l'épitope T CD8+ est choisi parmi: survivine 96-104 (LTLGEFLKL) ou 95-104 (LTLGEFLKL), survivine-2B 80-88 (AYACNTSTL) et les peptides tels que décrits dans le Tableau 1 deBachinsky et al., Cancer Immun., 2005, 5, 6. Selon un autre mode de réalisation avantageux de ladite composition, elle comprend au moins deux peptides de la survivine incluant un épitope T CD4+ tels que défini ci-dessus, sélectionnés dans le groupe constitué par l'une des combinaisons suivantes: - le peptide 17-31 et l'un au moins des peptides peptide 19-33, 90- 104 ou 128-142 - le peptide 19-33 et le peptide 96-110, - le peptide 90-104 et le peptide 17-31, - le peptide 96110 et le peptide 90-104, et - les peptides 93-107 et 128-142, et l'un au moins des peptides 17-30 31, 19-33, 96-110 ou 90-104. De telles combinaisons permettent avantageusement d'induire des lymphocytes T CD4+ chez la quasi-totalité des individus vaccinés. 20 Selon encore un autre mode de réalisation avantageux de ladite composition, elle comprend un peptide incluant un épitope T CD4+ universel, tel que défini ci-dessus. La présente invention a également pour objet l'utilisation d'au moins un peptide, un fragment polyépitopique, une protéine de fusion, un lipopeptide et/ou un vecteur tels que définis ci-dessus pour la préparation d'un vaccin destiné à la prévention ou au traitement du cancer. Les peptides selon la présente invention et les produits dérivés (fragment polyépitopique, protéine de fusion, lipopeptide, vecteur recombinant) peuvent être utilisés en immunothérapie dans le traitement des tumeurs surexprimant la survivine. Lesdits peptides ou produits dérivés sont utilisés, soit comme vaccin, soit en thérapie cellulaire, ou bien encore par une combinaison des deux approches. La thérapie cellulaire comprend, la préparation de cellules présentatrices d'antigènes (cellules dendritiques) par un protocole classique comprenant l'isolement de cellules mononucléées du sang périphérique (PBMC) d'un patient à traiter et la mise en culture des cellules dendritiques en présence de peptide(s). Dans une seconde étape les cellules présentatrices d'antigène chargées avec le peptide sont réinjectées au patient. La présente invention a également pour objet l'utilisation d'au moins un peptide, un fragment polyépitopique, une protéine de fusion, un lipopeptide et/ou un vecteur tels que définis ci-dessus pour la préparation d'un réactif de diagnostic, d'évaluation du pronostic ou de suivi du traitement d'un cancer. De préférence, ledit réactif comprend un peptide ou une protéine de fusion tels que définis ci-dessus, éventuellement marqués ou complexés, notamment complexés à des molécules HLA II marquées, par exemple biotinylées, sous la forme de complexes multimériques comme des tétramères. La présente invention a également pour objet une méthode in vitro, de diagnostic, d'évaluation du pronostic ou de suivi du traitement d'un cancer chez un individu, caractérisée en ce qu'elle comprend: - la mise en contact d'un échantillon biologique dudit individu avec un peptide tel que défini ci-dessus, et - la détection de lymphocytes T CD4+ spécifiques de la survivine, par tout moyen approprié. La présente invention a également pour objet un kit de diagnostic, d'évaluation du pronostic ou de suivi du traitement d'un cancer, caractérisé en ce qu'il comprend au moins un peptide tel que défini cidessus, et éventuellement un réactif de détection de lymphocytes T CD4+. La méthode selon l'invention permet de suivre l'évolution de la réponse T CD4+ dirigée contre la survivine au cours d'un cancer ou bien d'un traitement antitumoral, notamment une immunothérapie antitumorale; les lymphocytes T CD4+ spécifiques de la survivine peuvent être de type TH 1 (sécrétion d'IFN-y), TH2 (sécrétion d'IL-4) ou T régulateur (sécrétion d'IL-10 ou de TGF-f3) ; il est attendu que la réponse T de type TH1 est signe d'une évolution favorable du cancer alors que la réponse T régulatrice est signe d'une évolution défavorable de ce cancer. La détection est effectuée à partir d'un échantillon biologique contenant des cellules T CD4+, notamment un échantillon de cellules mononucléées isolées à partir d'un prélèvement de sang périphérique (PBMCs). Les lymphocytes T CD4+ spécifiques de la survivine sont détectés par tous moyens, connus en eux-mêmes. Par exemple, on peut utiliser des moyens directs comme la cytométrie de flux en présence de complexes multimériques tels que définis ci-dessus, ou bien des moyens indirects comme les tests de prolifération lymphocytaire et les dosages de cytokines telles que l'IL-2, l'IL-4, VIL-5, IL-10 et l'IFN-y, notamment par des techniques immunoenzymatiques (ELISA, RIA, ELISPOT) ou par cytométrie de flux (dosage des cytokines intracellulaires). De manière plus précise: Une suspension de cellules (PBMC, PBMC déplétées en cellules CD8+, lymphocytes T préalablement enrichis par une étape de culture in vitro avec les peptides tels que définis ci-dessus ou des lymphocytes T clonés) est cultivée pendant 3 à 5 jours en présence desdits peptides et au besoin de cellules présentatrices appropriées, telles que des cellules dendritiques, des PBMC autologues ou hétérologues, des cellules lymphoblastoïdes telles que celles obtenues après infection par le virus EBV ou des cellules génétiquement modifiées. La présence de cellules T CD4+ spécifiques de la survivine, dans la suspension initiale est détectée à l'aide des peptides, selon l'une des méthodes suivantes: * test de prolifération: La prolifération des cellules T CD4+ spécifiques de la survivine est mesurée par incorporation de thymidine tritiée dans l'ADN des cellules. * test ELISPOT: Le test ELISPOT permet de révéler la présence de cellules T sécrétant de cytokines (IL-2, VIL-4, VIL-5, IL-10 et l'IFN-y), spécifiques d'un peptide tel que défini ci-dessus. Le principe de ce test est décrit dans Czerkinsky et al., J. Immunol. Methods, 1983, 65, 109-121 et Schmittel et al., J. Immunol. Methods, 1997, 210, 167-174, et sa mise en oeuvre est illustrée dans la Demande Internationale WO 99/51630 ou Gahéry-Ségard et al., J. Virol., 2000, 74, 1694-1703. * détection des cytokines: La présence de cellules T spécifiques de la survivine, sécrétant des cytokines telles que VIL-2, VIL-4, VIL-5, IL-10 et l'IFN-y est détectée, soit par dosage des cytokines présentes dans le surnageant de culture, par un test immunoenzymatique, notamment à l'aide d'un kit commercial, soit par détection des cytokines intracellulaires en cytométrie de flux. Le principe de détection des cytokines intracellulaires est décrit dans Goulder et al. , J. Exp. Med., 2000, 192, 1819-1832 et Maecker et al., J. Immunol. Methods, 2001, 255, 27-40 et sa mise en oeuvre est illustrée dans Draenert et al., J. Immunol. Methods, 2003, 275, 19-29. * complexes multimériques - un échantillon biologique, de préférence des cellules mononucléées du sang périphérique (PBMC), est mis en contact avec des complexes multimériques marqués, notamment par un fluorochrome, formés par la liaison entre des molécules HLA II solubles et des peptides tels que définis ci-dessus, et - les cellules marquées par lesdits complexes multimériques sont analysées, notamment par cytométrie de flux. De manière avantageuse, préalablement à la mise en contact de l'échantillon biologique avec lesdits complexes, on l'enrichit en cellules T CD4+, en 30 le mettant en contact avec des anticorps anti-CD4. Les complexes multimériques HLA II/peptide peuvent être préparés à partir de molécules natives extraites de cellules exprimant une molécule HLA II ou de molécules recombinantes produites dans des cellules hôte appropriées comme précisé, par exemple dans NOVAK et al. (J. Clin. Investig., 1999, 104, R63-R67) ou dans KURODA et al. (J. Virol., 2000, 74, 18, 8751-8756). Ces molécules HLA II peuvent notamment être tronquées (délétion du domaine transmembranaire) et leur séquence peut-être modifiée afin de les rendre solubles ou bien de faciliter l'appariement des chaînes alpha et béta (Novak et al., précité). Le chargement de molécules HLA II avec le peptide peut se faire par mise en contact d'une préparation de molécules HLA II comme ci-dessus, avec le peptide. Par exemple, des molécules HLA II solubles et biotinylées sont incubées, pendant 72 heures à 37 C, avec un excès d'un facteur 10 de peptides tels que définis ci-dessus, dans un tampon phosphate-citrate 10 mM, NaCl 0,15 M à un pH compris entre 4,5 et 7. Alternativement, la séquence du peptide peut être introduite dans l'une des chaînes de la molécule HLA II sous forme d'une protéine de fusion qui permet la préparation de complexes multimériques HLA II/peptides à partir de cellules hôtes appropriées exprimant ladite protéine de fusion. Lesdits complexes peuvent ensuite être marqués, notamment par la biotine. Les complexes multimériques de type tétramère sont notamment obtenus en ajoutant aux molécules HLA II chargées, de la streptavidine marquée par un fluorochrome en quantité quatre fois moindre (mole à mole) par rapport aux molécules HLA II. L'ensemble étant ensuite incubé pendant une durée suffisante, par exemple une nuit à température ambiante. Les complexes multimériques peuvent également être formés, soit par incubation de monomères HLA II/peptides avec des billes magnétiques couplées à la streptavidine comme décrit pour les molécules HLA I (Bodinier et al., Nature, 2000, 6, 707-710), soit par insertion de monomères HLA II/peptides dans des vésicules lipidiques comme décrit pour les molécules du CMH de classe II murines (Prakken, Nature Medicine, 2000, 6, 1406-1410). Pour utiliser ces complexes multimériques HLA II/peptide notamment de type tétramère, on met en contact une suspension de cellules (PBMC, PBMC déplétées en cellules CDS+, lymphocytes T préalablement enrichis par une étape de culture in vitro avec des peptides tels que définis ci-dessus ou des lymphocytes T clonés) avec des complexes multimériques HLA II/peptide à une concentration appropriée (par exemple de l'ordre de 10 à 20 g/ml), pendant une durée suffisante pour permettre la liaison entre les complexes et les lymphocytes T CD4+ spécifiques de la survivine (par exemple, de l'ordre de I à 3 heures). Après lavage, la suspension est analysée par cytométrie de flux: on visualise le marquage des cellules par les complexes multimériques qui sont fluorescents. La cytométrie de flux permet de séparer les cellules marquées par les complexes multimériques HLA II/peptide des cellules non marquées et d'effectuer ainsi un tri cellulaire. IO La présente invention a ainsi, en outre, pour objet un procédé de tri de lymphocytes T CD4+ spécifiques de la survivine, caractérisé en ce qu'il comprend au moins les étapes suivantes: - la mise en contact, in vitro, d'un échantillon cellulaire avec des complexes multimériques HLA II/peptide marqués, notamment par un fluorochrome, lesdits complexes étant formés par la liaison de molécules HLA II solubles avec au moins un peptide tel que défini ci-dessus, et - le tri des cellules liées auxdits complexes HLA II/peptide, notamment en cytométrie de flux. La présente invention a en outre pour objet un peptide, un fragment polyépitopique, une protéine de fusion, un lipopeptide, un polynucléotide,une cassette d'expression, un vecteur recombinant et une cellule hôte procaryote ou eucaryote modifiée, tels que définis ci-dessus. L'invention englobe en particulier: a) des cassettes d'expression comprenant au moins un polynucléotide tel que défini ci-dessus, sous le contrôle de séquences régulatrices de la transcription et éventuellement de la traduction appropriées (promoteur, activateur, intron, codon d'initiation (ATG), codon stop, signal de polyadénylation), et b) des vecteurs recombinants comprenant un polynucléotide conforme à l'invention. Avantageusement ces vecteurs sont des vecteurs d'expression comprenant au moins une cassette d'expression telle que définie ci-dessus. Les polynucléotides, Ies vecteurs recombinants et les cellules transformées tels que définis ci-dessus, sont utiles notamment pour la production des peptides, fragments polyépitopiques et protéines de fusion selon l'invention. Les polynucléotides selon l'invention sont obtenus par les méthodes classiques, connues en elles-mêmes, en suivant les protocoles standards tels que ceux décrits dans Current Protocols in Molecular Biology (Frederick M. A USUBEL, 2000, Wiley and son Inc, Library of Congress, USA) . Par exemple, ils peuvent être obtenus par amplification d'une séquence nucléique par PCR ou RT-PCR, par criblage de banques d'ADN génomique par hybridation avec une sonde homologue, ou bien par synthèse chimique totale ou partielle. Les vecteurs recombinants sont construits et introduits dans des cellules hôtes par les méthodes classiques d'ADN recombinant et de génie génétique, qui sont connues en elles-mêmes. Les peptides et leurs dérivés (variants, peptides modifiés, lipopeptides, fragments polyépitopiques, protéines de fusion) tels que définis cidessus, sont préparés par les techniques classiques connues de l'Homme du métier, notamment par synthèse en phase solide ou liquide ou par expression d'un ADN recombinant dans un système cellulaire approprié (eucaryote ou procaryote). De manière plus précise: - les peptides et leurs dérivés (variants, fragments polyépitopiques) peuvent être synthétisés en phase solide, selon la technique Fmoc, originellement décrite par Merrifield et al. (3. Am. Chem. Soc., 1964, 85: 2149-) et purifiés par chromatographie liquide haute performance en phase inverse, - les lipopeptides peuvent être notamment préparés selon le procédé décrit dans les Demandes Internationales WO 99/40113 ou WO 99/51630. - les peptides et dérivés tels que les variants, les fragments polyépitopiques et les protéines de fusion peuvent également être produits à partir des ADNc correspondants, obtenus par tout moyen connu de l'homme du métier; l'ADNc est cloné dans un vecteur d'expression eucaryote ou procaryote et la protéine ou le fragment produits dans les cellules modifiées par le vecteur recombinant sont purifiés par tout moyen approprié, notamment par chromatographie d'affinité. Outre les dispositions qui précèdent, l'invention comprend encore d'autres dispositions, qui ressortiront de la description qui va suivre, qui se réfère à des exemples de mise en oeuvre de l'objet de la présente invention, avec référence au dessin annexé dans lequel: - la figure 1 illustre les éléments de restriction de lignées de lymphocytes T CD4+ spécifiques de différents peptides de la survivine, issues d'un donneur sain (D174), mesurée par un test ELISPOT en présence de lymphocytes T CD4+ (5000 cellules/puits), de cellules L-DR7, L-DR15, L-DRB4 ou L-DP4 (30000 cellules/puits), et de peptide (10 mg/ml) (barre noire) ou sans peptide (barre blanche). Chaque barre représente le nombre moyen de spots sur deux puits écart-type. Les lignées 174-31, 174-36 sont spécifiques du peptide 17-31, la lignée 174-25 est spécifique des peptides 90-104 et 93- 107, la lignée 174-45 est spécifique des peptides 90-104, 93-107et 96-110, la lignée 174-50 est spécifique du peptide 128-142. EXEMPLE 1: ACTIVITE DE LIAISON DES PEPTIDES DE LA SURVIVINE VIS-A-VIS DES MOLECULES HLA II 1) Matériels et méthodes a) Peptides Des peptides de 15 acides aminés (15mères) couvrant la totalité de la séquence de la survivine (SwissProt 015392) ont été sélectionnés en fonction de la présence de résidus aromatiques ou hydrophobes en position 3 ou 4, pour l'ancrage dans la poche Pl des molécules HLA-DR et HLA-DP4. Les séquences des peptides sélectionnés sont présentées dans le Tableau II et la liste de séquences jointe en annexe. Les peptides ont été synthétisés selon la stratégie Fmoc en synthèse parallèle sur phase solide, purifiés par HPLC et contrôlés par spectrométrie de masse (ES-MS). Tableau II: Séquences des peptides de la survivine (SEQ ID NO: 1 à 28) SEQ ID NO: positions séquence 1 1-15' M G A P T L P P A W Q P F L K 2 4- 18 P T L P P A W Q P F L K D H R 3 8-22 P A W Q P F L K D H R I S T F 4 11-25 Q P F L K D H R t S T F K N W 17-31 H R I S T F K N W P F L E G C 6 19-33 I S T F K N W P F L E G C A C 7 20-34 S T F K N W P F L E G C A C T 8 23-37 K N W P F L E G C A C T P E R 9 36-50 E R M A E A G F I H C P T E N 41-55 A G F I H C P T E N E P D L A 11 52-66 P D L A Q C F F C F K E L E G 12 56-70 Q C F F C F K E L E G W E P D 13 59-73 F C F K E L E G W E P D D D P 14 62-76 K E L E G W E P D D D P I E E 65-79 E G W E P D D D P 1 E E H K K 16 72-86 D P I E E H K K H S S G C A F 17 84-98 C A F L S V K K Q F E E L T L 18 87-101 L S V K K Q F E E L T L G E F 19 90-104 K K Q F E E L T L G E F L K L 91-105 K Q F E E L T L G E F L K L D 21 93-107 F E E L T L G E F L K L D R E 22 94-108 E E L T L G E F L K L D R E R 23 96-110 L T L G E F L K L D R E R A K 24 99-113 G E F L K L D R E R A K N K I 102- 116 L K L D R E R A K N K I A K E 26 111-125 N K 1 A K E T N N K K K E F E 27 122-136 K E F E E T A K K V R R A I E 28 128-142 A K K V R R A I E Q L A A M D * les positions sont numérotées en référence à la séquence de la survivine humaine de 142 acides aminés (SwissProt 015392). b) Test de liaison HLA II/peptide Les tests de liaison aux molécules HLA II sont des tests de liaison en compétition avec une révélation immunoenzymatique, tels que décrits dans le brevet américain US 6,649,166 et la Demande Internationale PCT WO 03/040299, respectivement pour les molécules HLA-DR et HLA-DP4. La mise ne oeuvre de ces tests pour mesurer l'activité de liaison de peptides issus de différents antigènes, est illustrée dans le brevet américain US 6,649,166 et les Demandes Internationale PCT WO 02/090382, WO 03/040299 and WO 2004/014936. De manière plus précise, les peptides: HA 306-318 (PKYVKQNTLKLAT, SEQ ID NO: 29), A3 152-166 (EAEQLRAYLDGTGVE, SEQ ID NO: 30), MT 2-16 (AKTIAYDEEARRGLE, SEQ ID NO: 31), BI 21-36 (TERVRLVTRHIYNREE, SEQ ID NO: 32) YKL (AAYAAAKAAALAA, SEQ ID NO: 33), LOL 191-210 (ESWGAVWRIDTPDKLTGPFT, SEQ ID NO: 34), E2/E168 (AGDLLAIETDKATI, SEQ ID NO: 35) et Oxy 271-287 (EKKYFAATQFEPLAARL, SEQ ID NO: 36), biotinylés au niveau du résidu NH2 terminal, selon le protocole décrit dans Texier et al., J. Immunol., 2000, 164, 3177-3184), sont utilisés comme traceur dans les conditions telles que précisées dans le Tableau ci-après. TABLEAU III: Conditions des tests de liaison aux molécules HLA II Allèles Dilution Traceurs Concentration pH Temps IC5o (nM) de HLA II traceur optimal d'incubation (nM) (h) DRB1*0101 11200 HA306-318 1 6 24 5,5 DRB1*0301 1/40 MT 2-16 200 4,5 72 450 DRB1*0401 1/80 HA 306-318 30 6 24 50 DRB1*0701 1/60 YKL 10 5 24 15 DRB1*1101 1/80 HA 306-318 10 5 24 25 DRB1*1301 1/40 8121-36 100 4,5 72 800 DRB1 *1501 1/100 A3152-166 30 4,5 72 52 DRB5*0101 1/80 HA 306-318 10 5,5 24 8 DRB3*0101 1/40 LoI191-120 10 5,5 24 14 DRB4*0101 1/20 E2/E168 10 5 72 15 DBP1*0401 1180 0xy 271-287 1 5 24 10 DPB1*0402 1/40 Oxy 271-287 1 5 24 6,5 Les résultats sont exprimés sous la forme de la concentration (nM) de peptide compétiteur qui inhibe 50% de la liaison maximale du peptide traceur biotinylé (IC50). La sensibilité de chaque test est reflétée par les IC50 observées avec les peptides non-biotinylés qui correspondent aux traceurs. Un peptide présentant une activité de liaison (IC50) à une molécule HLA II, inférieure à 1000 nM, possède une bonne affinité pour cette molécule HLA II, un peptide présentant une activité de liaison (IC50) à une molécule HLA II, inférieure à 100 nM, possède une forte affinité pour cette molécule HLA IL 2) Résultats Trois régions distinctes de la survivine sont capables de se lier avec une bonne affinité (IC50 Tableau IV: Activités de liaison des peptides de la survivine vis-à-vis des 12 molécules HLA II prépondérantes (IC50 en nM) les valeurs sont le résultat de 3 expériences indépendantes; elles ne varient pas de plus d'un facteur 3 entre les expériences. * non déterminé (peptide insoluble) ** activité de liaison du traceur En revanche, les peptides issus du reste de la séquence ne présentent pas d'activité de liaison significative pour au moins trois molécules HLA II prépondérantes dans la population caucasienne. En outre, aucun peptide ne se lie aux molécules DR3, DRB3 et DRB4. Les peptides de la région N-terminale ont une bonne affinité pour les molécules HLA-DR1, DR7, DR11, DR13, DR15, DRB5, DP401 et DP402. Dans la région 84-113, les capacités de liaison des quatre peptides chevauchants 84-98, 90-104, 93-107 et 96-110 couvrent les molécules HLADR1, DR4, DR7, DR1 I, DRI3, DR15, DRB5, DP401 et DP402. Le peptide 91-105 présente nb de peptides DR1 DR3 DR4 DR7 DR11 DRI3 DR15 DRB3 DRB4 DRB5 DP401 DP402 molécules Référence" 2 346 33 16 10 609 41 16 24 8 15 25 fixées >100000 80000 >100000 >100000 8000 40000 >100000 > 100000 >100000 5477 2314 5200 8718 29000 2191 2408 22 3674 76000 2268 3.00000 302 510300 5503 6500 210 >100000 >100000 >100000 > 100000 3421 >100000 >100000 >100000 >100000 49000 3795 3622 >100000 7000 10000 328 3382 >100000 23000 2245 12649 >100000 5348 >100000 >100000 3000 12000 >100000 20000 >100000 > 100000 8000 >100000 >100000 45000 >100000 >100000 65000 29000 >100000 >100000 >100000 >100000 >100000 >100000 > 100000 >100000 >100000 11000 >100000 >100000 >10n0nn 6200 >innnnn 1r 5 167 280 v i 145 11 612 1 529 20 302 4?0 vJGO 3 915 0000C 22 40000 >100000 >100000 >100000 >100000 18 >100000 70000 90000 00000 70000 16 >100000 C0000>100000 147 >100000 284 > 100000 1303 1090 13000 20-34 11 23-37 71 36-50 2550 41-55 2315 52-66 4100 56-70 1597 59-73 3759 62-76 >100000 65-79 >100000 72-86 95000 84-98 2828 101 150 90-104 40 91-105 12 93-107 128 94108 n.d'. 96-110 18 99-113 48 102-116 7746 111-125 5000 122-136 5657 128-142 6 1-15 10800 >100000 >100000 >100000 4-18 45000 >100000 >100000 >100000 8-22 6573 16000 46000 9391 11-25 6000 65000 45000 8000 ' 17-31 19 >100000 19-33 10 >100000 >100000 >100000 5200 60000 37000 >100000 17000 17000 5586 >100000 5000 3735 1148 11832 22000 6673 92 >100000 >100000 13000 363 >100000 58000 9000 1844 >100000 > 100000 >100000 >100000 >100000 >100000 >100000 >100000 >100000 >100000 >100000 >100000 2569 19000 179 >100000 6450 705 >100000 748 140 >100000 8J00 540 n.tl. 4673 2134 40 >100000 >100000 8944 >100000 >100000 30000 1 310 12000 352 1342 25 63 33 41 329 147.100000 9200 6928 8998 3594 21000 10450 33000 25000 2 n.d >100000 >100000 >100000 >100000 4583 > 100000 >100000 >100000 >100000 une forte affinité pour les molécules DR1, DR7, DRB5, DP401 et DP402. Dans la région C-terminale, le peptide 128-142 se lie avec une forte affinité aux molécules DR1 et DR11 et une affinité moindre aux molécules HLA-DR4 et HLA-DR15. Sept peptides présentant une bonne affinité pour aux moins quatre molécules HLA II prépondérantes dans la population caucasienne choisies parmi HLA -DR1, -DR4, -DR7, -DR 11, -DR 15, DRB5, DP401 et DP402, ont été choisis pour les tests d'immunogénicité : 17-3I, 20-34, 84-98, 90-104, 93107, 96-110 et 128-142. EXEMPLE 2: IMMUNOGENICITE DES PEPTIDES DE LA SURVIVINE IN VITRO La capacité des peptides ayant une bonne affinité pour les molécules HLAII prépondérantes dans la population caucasienne, à induire in vitro une stimulation de lymphocytes T spécifiques, a été évaluée à partir de prélèvements sanguins d'individus sains (non porteurs de tumeur). Il s'agit d'évaluer la capacité à recruter des lymphocytes précurseurs CD4+ alors qu'ils sont chez un individu naïf à une très faible fréquence, c'est-à-dire d'effectuer une immunisation in vitro au moyen de ces peptides. 1) Matériels et méthodes a) individus testés Des prélèvements sanguins ont été effectués sur quatre individus sains dont le génotype HLA-DR et HLA-DP a été déterminé par SSP, à l'aide du kit OLERUP SSPTM HLA-DPBI et HLA-DRB 1. Les allèles HLA-DRB 1 et HLA-DPB1 de ces individus sont présentés dans le Tableau V. Tableau V: Typage HLA des individus testés b) Obtention de lignées de lymphocytes T CD4+ spécifiques de la survivine et restreintes aux molécules HLA II prépondérantes Les cellules mononucléées du sang périphérique (PBMC) ont été séparées sur un gradient de Ficoll. Les PBMCs ont ensuite été mises en culture dans du milieu AIM V (LIFE TECHNOLOGIES) et incubées dans des flasques, à l'étuve à Donneur DRB1 2nd molécule sain DR D169 DRB1*1502 DRB5 DPB1*0401 D171 DRB1*0101 DRB1*0401 DRB4 DPB1*0401 D174 DRB1*0701 DRB1*1501 DRB4 DRB5 DPB1*0401 D179 DRB1*0701 DRB1*1301 DRB4 DRB3 nd DPB1 37 C en présence de 5% CO2. Après une nuit d'incubation, les cellules non adhérentes ont été récupérées, puis les lymphocytes T CD4+ ont été purifiées à l'aide d'anticorps anti-CD4 couplés à des billes magnétiques (kit MYLTENYI BIOTEC), et congelés. Les cellules adhérentes ont été incubées pendant 5 jours, dans du milieu AIM V contenant 1000U/mI de GM-CSF et 1000U/ml d'IL- 4, puis les cellules différenciées en cellules dendritiques (cellules dendritiques immatures) ont ensuite été cultivées pendant 2 jours, en présence de 1 g/ml de LPS, 1000 Ulm] d'IL-4 et 1000 U/ml de GM-CSF, de manière à induire leur maturation. Les cellules dendritiques matures (100 000 cellules/puits) ont alors été incubées avec un mélange de peptides (10 g de chaque peptide dans du milieu IMDN (INVITROGEN) supplémenté avec de la glutamine (24 mM, SIGMA), de l'asparagine (55 mM, SIGMA), de l'arginine (150 mM, SIGMA), de la pénicilline (50UI/m1, INVITROGEN), de la streptomycine (50 mg/mi, INVITROGEN) et 10 % de sérum humain)), pendant 4 heures à 37 C. Les cellules dendritiques matures ont ensuite été lavées puis incubées, en présence des lymphocytes T CD4+ (100 000 cellules/puits) préalablement décongelés, dans du milieu contenant 1000 U/ml d'IL-6 et 10 ng/ml d'IL-12. Après 7 jours (J7), la culture a été stimulée une première fois, au moyen de cellules dendritiques matures préalablement décongelées et chargées par le mélange de peptides, dans du milieu contenant de l'IL-2 (10 U/ml) et de 1'IL-7 (5 ng/ml). Après trois stimulations supplémentaires (J14, J21, J28) au moyen de cellules dendritiques chargées, dans du milieu contenant uniquement de l'IL-7 (5 ng/ml), les cellules ont été testées en ELISPOT, 6 jours au moins après la dernière stimulation. c) Obtention de lignées de lymphocytes T CD4+ spécifiques de la survivine et restreintes à HLA-DP4 Des lignées de lymphocytes T CD4+ spécifiques de la survivine et restreintes à HLA-DP4 ont été produites en utilisant le mélange des peptides 84-98, 93-107, 90-104 et 19-33 pour la stimulation des cellules dendritiques autologues, selon un protocole similaire à celui utilisé pour la production de lignées de lymphocytes T restreintes à l'ensemble des molécules HLA-DR prépondérantes dans la population caucasienne. d) Analyse de la spécificité des lignées en ELISPOT Des anticorps antiIFN-7 (1-D 1 K, MABTECH) dilués à 1 g/m1 dans du tampon PBS ont été adsorbés sur des plaques de nitrocellulose (MILLIPORE) pendant 1 heure à 37 C. Les plaques ont ensuite été lavées avec du PBS puis saturées avec du milieu ISCOVE contenant 10 % de sérum humain du groupe AB (100 pl/puits), pendant 2 h à 37 C. Les cellules présentatrices d'antigène sont, soit des cellules dendritiques autologues immatures préparées comme précisé ci-dessus, soit une lignée de fibroblastes de souris (lignée L), transfectée avec l'ADNc codant pour l'une des molécules HLA-DR ou HLA-DP4 à tester (Yu et al. Hum. Immunol., 1990, 27, 132-135), de façon à vérifier la spécificité des lignées vis-à-vis des molécules HLA-DR et HLA- DP4. Les cellules dendritiques (105 cellules/puits) ou des cellules L transfectées DP4 (30 000 cellules/puits) et 5000 lymphocytes à tester ont ensuite été ajoutés dans les plaques et incubées 24 h à 37 C, en présence ou en l'absence d'un seul peptide (2 g) ou d'un mélange de peptides (2 g de chaque peptide). Pour les analyses dose-réponse, les peptides sont utilisées à différentes concentration variant de 10-5 à I0"10 M. Après trois lavages successifs avec de l'eau, puis avec du tampon PBS Tween 0,05%, et enfin avec du PBS seul, 100 l d'anticorps secondaire anti-IFN-Y conjugué à la biotine (7-B6-1-biotin, MABTECH), dilué à 0,25 g/ml dans du PBS contenant 1% BSA, a été ajouté dans chaque puits. Après une heure d'incubation, les plaques ont été lavées à nouveau et incubées avec 100 Eil/puits d'Extravidin-AKP (E-2636, SIGMA), diluée au 1/6000. Après lavage des plaques en tampon PBS, 100 pl de substrat NBT/BCIP (B-5655, SIGMA) dilué dans de l'eau (1 tablette dans 10 ml d'eau) ont été distribués dans chaque puits. La révélation immunoenzymatique a été arrêtée après environ 10 minutes, par rinçage extensif des plaques dans l'eau, et les spots colorés ont été comptés à l'aide d'un lecteur automatique (AID). Les Iignées sont considérées positives lorsque le nombre de spots est supérieur à trois fois celui obtenu avec le témoin négatif (témoin sans peptides) avec un minimum de 50 spots. Le témoin sans cellules présentatrices permet de vérifier la spécificité de la réponse pour HLA-DR ou HLA-DP4 (témoin de restriction). 2) Résultats a) Lignées spécifiques de l'ensemble des molécules HLA II prépondérantes 58 lignées spécifiques d'un peptide de la survivine ont été mises en évidence; ces lignées sont stimulées par le mélange de peptides (mix) présenté par des cellules dendritiques autologues mais pas en l'absence du mélange (témoin négatif). Tableau VI: Résumé de la spécificité des lignées de lymphocytes T Nb de lignées de lymphocytes T Individu peptide 17-31 20-34 84-98 90-104 93-107 96-110 128-142 D169 0 0 0 1 1 11 0 D171 2 1 3 3 0 0 8 D174 10 0 0 3 2 1 1 D179 1 0 2 2 1 2 3 total 13 1 5 9 4 14 12 % 22% 2% 9% 16% 7% 24% 21% Chaque lignée répond à au moins un des peptides du mélange. Les peptides les plus immunogènes sont les peptides 17-31, 96-110, 128-142 et 84-98, qui induisent respectivement 22%, 24 %, 21 % et 16 % des lignées testées. Ces peptides sont immunogènes chez trois des quatre donneurs testés. Les éléments de restriction des lignées de lymphocytes T CD4+ ont été testés pour le donneur 174, par ELISPOT en présence de cellules exprimant l'une des molécules HLA II du donneur (L-DR7, L-DR15, L-DRB4 et L-DP4) ou en l'absence de cellule présentatrices. Les lignées sont induites spécifiquement par la présentation du peptide par les cellules présentatrices d'antigène étant donné qu'aucune production d'IFN-y n'est détectée en l'absence de peptide ou en l'absence de cellules présentatrices (Figure 1). Les épitopes de la survivine situés dans la région N-terminale (17-31 et 128-142) sont restreints à la molécule DRI5. Le peptide 17-31 peut également être présenté plus faiblement par les molécules DR7, DP4 et DRB4. Les épitopes de la région 90-110 semblent plutôt présentés par les molécules DP4 et DR7. Le peptide 17-31 est capable de stimuler des lymphocytes T CD4+ autologues à une très faible concentration (le m). En revanche les autres peptides stimulent ces lymphocytes T CD4+ à des concentrations plus élevées (10-7 à 10-5 M). b) Lignées spécifiques d'HLA-DP4 4 lignées spécifiques d'un peptide de la survivine et restreintes à HLA-DP4 ont été mises en évidence; ces lignées sont stimulées par le mélange de peptides présenté par HLA-DP4 mais pas en l'absence du mélange (témoin négatif) ou d'HLA-DP4 (témoin sans APC, Tableau VII). Tableau VII: Immunogénicité des peptides dans un contexte HLA-DP4 Chaque lignée répond à un des peptides du mélange. Sur les quatre 5 peptides du mélange, trois sont immunogènes dans un contexte HLA-DP4 (peptides 93-107, 90-104 et 19-33). Ainsi que cela ressort de ce qui précède, l'invention ne se limite nullement à ceux de ses modes de mise en oeuvre, de réalisation et d'application qui viennent d'être décrits de façon plus explicite; elle en embrasse au contraire toutes les variantes qui peuvent venir à l'esprit du technicien en la matière, sans s'écarter du cadre, ni de la portée, de la présente invention. Nombre de spots témoin mélange de donneur lignées négatif peptides 84-98 93-107 90-104 19-33 sans APC 169 169-14 2( 0) 210( 11) 4( 2) 3( 1) 182( 21) 1( O) 56( 21) 169-34 4( 4) 255( 18) 3( 3) 2( 2) 4( 2) 228( 17) 10( 3) 169-56 3( 1) 199( 24) 2( 2) 2( 2) 2( 1) 195( 0) 104( 30) 171 171-3 5 ( 4) 103( 18) 7( 1) 145( 4) 62( 33) 5( 0) 1( 1) REVENDICATIONS 1 ) Peptide dérivé de l'isoforme alpha de la survivine, apte à être présenté par au moins une molécule HLA II prépondérante dans la population caucasienne et à induire des lymphocytes T CD4+ spécifiques de la survivine, lequel peptide étant sélectionné dans le groupe constitué par: a) les fragments de 13 à 18 acides aminés consécutifs situés entre les positions 17 et 34 de l'isoforme alpha de la survivine, b) les fragments de 13 à 30 acides aminés consécutifs situés entre les positions 84 et 113 de l'isoforme alpha de la survivine, c) les fragments de 13 à 21 acides aminés consécutifs situés entre les positions 122 et 142 de l'isoforme alpha de la survivine, et d) les variants des peptides définis en a), b) ou c) qui présentent une activité de liaison à au moins une molécule HLA-II prépondérante dans la population caucasienne, inférieure à 1000 nM et sont capables d'induire des lymphocytes T CD4+ spécifiques de la survivine, pour une utilisation comme antigène dans la vaccination prophylactique ou thérapeutique, le diagnostic, le pronostic ou le suivi thérapeutique du cancer. 2 ) Peptide selon la revendication 1, caractérisé en ce que ladite molécule HLA II prépondérante dans la population caucasienne est sélectionnée dans le groupe constitué par: HLA-DR1, HLA-DR3, HLA-DR4, HLADR7, HLA-DRI 1, HLA-DR13, HLA-DR15, HLA-DRB3, HLA-DRB4, HLA-DRB5 et HLADP4. 3 ) Peptide selon la revendication 2, caractérisé en ce que ladite molécule HLA II est codée respectivement par les allèles HLA DRB1*0101, DRB1*0301, DRBI*0401, DRBI*0701, DRBI*1101, DRBI*1301, DRBI*1501, DRB3*0101, DRB4*0101, DRB5*0101, DP*0401 et DP*0402. 4 ) Peptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisé en ce qu'il est apte à être présenté par au moins trois molécules HLA II prépondérantes dans la population caucasienne. 5 ) Peptide selon la revendication 3, caractérisé en ce qu'il est apte à 30 être présenté par au moins une molécule HLA-DP401 ou HLA-DP402. 6 ) Peptide selon la revendication 4 ou la revendication 5, caractérisé en ce qu'il est sélectionné dans le groupe constitué par les peptides de 15 acides aminés situés entre les positions suivantes de l'isoforme alpha de la survivine: 17à31,19à33,20à34,84à98,90à104,91à105,93à107,96à110, 99à113, 122 à 136 et 128 à 142. 7 ) Peptide selon la revendication 6, caractérisé en ce qu'il est apte à être présenté par au moins quatre molécules HLA II prépondérantes dans la population caucasienne, et en ce qu'il est sélectionné dans le groupe constitué par les peptides: 17-31, 19-33, 20-34, 84-98, 90-104, 91-105, 93-107, 96-110 et 128-142. 8 ) Peptide selon la revendication 7, caractérisé en ce qu'il est apte à être présenté par une molécule HLA-DP40I ou HLA-DP402 et en ce qu'il est sélectionné dans le groupe constitué par les peptides: 17-31, 19-33, 2034, 84-98, 90-104, 91-105, 93-107 et 96-110. 9 ) Peptide selon l'une quelconque des revendications 6 à 8, caractérisé en ce qu'il est sélectionné dans le groupe constitué par les séquences SEQ IDNO:5,6,7, 17, 19, 20, 21, 23, 24, 27 et 28. 10 ) Peptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 5, caractérisé en ce qu'il s'agit d'un variant d'un peptide tel que défini à l'une quelconque des revendications 1 et 6 à 9, obtenu par la substitution d'au moins un des résidus P1, P6 et/ou P9 d'ancrage aux molécules HLA II, par un acide aminé aromatique ou hydrophobe, du résidu P6 par une cystéine (C) , du résidu P9 par C, D, Q, S, T ou E et/ou du résidu P4 par un autre acide aminé naturel ou synthétique. 11 ) Peptide selon l'une quelconque des revendications I à 10, caractérisé en ce qu'il présente une séquence de 13, 14, 15, 16, 17, 18, 19, 20, 21, 22, 23, 24 ou 25 acides aminés. 12 ) Peptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 11, 25 caractérisé en ce qu'il est marqué ou complexé. 13 ) Peptide selon la revendication 12, caractérisé en ce qu'il est complexé à une molécule HLA II marquée. 14 ) Fragment polyépitopique comprenant la concaténation d'au moins deux épitopes identiques ou différents dont l'un au moins est un peptide tel que défini à I'une quelconque des revendications 1 à Il, pour une utilisation comme antigène dans la vaccination prophylactique ou thérapeutique, le diagnostic, le pronostic ou le suivi thérapeutique du cancer. 15 ) Fragment polyépitopique selon la revendication 14, caractérisé en ce qu'il comprend la concaténation d'au moins un peptide tel que défini à l'une quelconque des revendications 1 à 12 et d'au moins un épitope T CD8+ de la survivine et/ou un épitope T CD4+ universel. 16 ) Fragment polyépitopique selon la revendication 15, caractérisé en ce que l'épitope T CD8+ est choisi parmi les séquences SEQ ID NO: 37 à 39. 17 ) Protéine de fusion constituée par une protéine ou un fragment de protéine, fusionné à un peptide tel que défini à l'une quelconque des revendications 1 à 11 ou un fragment polyépitopique tel que défini à l'une quelconque des revendications 14 à 16, pour une utilisation comme antigène dans la vaccination prophylactique ou thérapeutique, le diagnostic, le pronostic ou le suivi thérapeutique du cancer. 18 ) Protéine de fusion selon la revendication 17, caractérisée en ce que ladite protéine ou ledit fragment est sélectionné dans le groupe constitué par une chaîne alpha ou béta d'une molécule HLA II, un fragment de ladite chaîne correspondant à une molécule HLA II soluble et une séquence de ciblage dans l'endosome. 19 ) Protéine de fusion selon la revendication 18, caractérisée en ce que ladite séquence de ciblage est dérivée de la chaîne invariable li ou de la protéine LAMP-1. 20 ) Lipopeptide obtenu par addition d'un lipide sur une fonction aaminée ou une fonction réactive de la chaîne latérale d'un peptide tel que défini à l'une quelconque des revendications 1 à 11 ou d'un fragment polyépitopique tel que défini à l'une quelconque des revendications 14 à 16, pour une utilisation comme antigène dans la vaccination prophylactique ou thérapeutique, le diagnostic, le pronostic ou le suivi thérapeutique du cancer. 21 ) Vecteur d'expression comprenant un polynucléotide codant pour un peptide tel que défini à l'une quelconque des revendications 1 à 11, un fragment polyépitopique tel que défini à l'une quelconque des revendications 14 à 16 ou une protéine de fusion telle que définie à l'une quelconque des revendications 17 à 19, sous le contrôle de séquences régulatrices appropriées, pour une utilisation comme antigène dans la vaccination prophylactique ou thérapeutique, le diagnostic, le pronostic ou le suivi thérapeutique du cancer. 22 ) Composition immunogène ou vaccinale, caractérisée en ce qu'elle comprend au moins un peptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 13, un fragment polyépitopique selon l'une quelconque des revendications 14 à 16, une protéine de fusion selon l'une quelconque des revendications 17 à 19, un lipopeptide selon la revendication 20 ou un vecteur selon la revendication 21, et un véhicule pharmaceutiquement acceptable, une substance porteuse ou un adjuvant. 23 ) Composition immunogène ou vaccinale selon la revendication 23, caractérisée en ce qu'elle comprend au moins un peptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 13 et un peptide incluant un épitope T CD8+ de la survivine, sous la forme d'un mélange de peptides, d'un fragment polyépitopique et/ou d'un vecteur d'expression codant lesdits peptides ou ledit fragment. 24 ) Composition immunogène ou vaccinale selon la revendication 23, caractérisée en ce que ledit épitope T CD8+ est choisi parmi les séquences SEQ ID NO: 37 à 39. 25 ) Composition immunogène ou vaccinale selon l'une quelconque des revendications 22 à 24, caractérisée en ce qu'elle comprend au moins deux peptides différents tels que définis à l'une quelconque des revendications 1 à 13, sélectionnés dans le groupe constitué par l'une des combinaisons suivantes: - le peptide 17-31 et l'un au moins des peptides 19-33, 90-104 ou 128-142 - le peptide 19-33 et le peptide 96-110, - le peptide 90-104 et le peptide 17-31, - le peptide 96-110 et le peptide 90-104, et - les peptides 93-107 et 128-142, et l'un au moins des peptides 17-25 31, 19-33, 96-110 ou 90-104. 26 ) Composition immunogène selon l'une quelconque des revendications 22 à 25, caractérisée en ce qu'elle comprend un épitope T CD4+ universel. 27 ) Utilisation d'au moins un peptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 13, un fragment polyépitopique selon l'une quelconque des reven- dications 14 à 16, une protéine de fusion selon l'une quelconque des revendications 17 à 19, un lipopeptide selon la revendication 20 ou un vecteur selon la revendication 21, pour la préparation d'un vaccin destiné à la prévention ou au traitement du cancer. 28 ) Utilisation d'au moins un peptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 13, un fragment polyépitopique selon l'une quelconque des revendications 14 à 16, une protéine de fusion selon l'une quelconque des revendications 17 à 19, un lipopeptide selon la revendication 20 ou un vecteur selon la revendication 21, pour la préparation d'un réactif de diagnostic, d'évaluation du pronostic ou de suivi du traitement d'un cancer. 29 ) Méthode in vitro de diagnostic, d'évaluation du pronostic ou de suivi du traitement d'un cancer chez un individu, caractérisée en ce qu'elle comprend: - la mise en contact, in vitro, d'un échantillon biologique dudit indi- vidu avec un peptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 13, et - la détection de lymphocytes T CD4+ spécifiques de la survivine, par tout moyen approprié. 30 ) Procédé de tri de lymphocytes T CD4+ spécifiques de la survivine, caractérisé en ce qu'il comprend au moins les étapes suivantes: - la mise en contact, in vitro, d'un échantillon cellulaire avec des complexes multimériques HLA II/peptide marqués, formés par la liaison de molécules HLA II solubles avec au moins un peptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 13, et - le tri des cellules liées auxdits complexes HLA II/peptide. 31 ) Peptide tel que défini à l'une quelconque des revendications 1 à 13. 32 ) Fragment polyépitopique comprenant la concaténation d'au moins deux épitopes identiques ou différents dont l'un au moins est un peptide selon la revendication 31. 33 ) Protéine de fusion constituée par une protéine ou un fragment de protéine, fusionné à un peptide selon la revendication 31 ou un fragment polyépitopique selon la revendication 32. 34 ) Lipopeptide obtenu par addition d'un lipide sur une fonction aaminée ou une fonction réactive de la chaîne latérale d'un peptide selon la revendica-30 tion 31 ou d'un fragment polyépitopique selon la revendication 32. 35 ) Polynucléotide codant pour un peptide selon la revendication 31, un fragment polyépitopique selon la revendication 32 ou une protéine de fusion selon la revendication 33. 36 ) Vecteur d'expression comprenant un polynucléotide selon la revendication 35 sous le contrôle de séquences régulatrices appropriées, de la transcription et éventuellement de la traduction. 37 ) Cellule hôte modifiée par un polynucléotide selon la revendication 35 ou un vecteur d'expression selon la revendication 36.