Brevet FR2873697A1 — publié le 20060203

o La présente Invention est relative à des agents de couplage comportant un groupement protecteur photolabile et à leur utilisation pour la fonctionnalisation de supports solides. La présente Invention est également relative aux supports solides fonctionnalisés par ces agents de couplage, ainsi qu'à leur utilisation pour l'immobilisation de molécules biologiques d'intérêt, notamment de molécules d'acide nucléique. Différentes méthodes permettant le greffage covalent de molécules biologiques d'intérêt, et notamment d'acide nucléique tel que les oligonucléotides (ON), sur un support solide ont été déjà été proposées. Dans le cadre particulier de la fixation d'ON, ces méthodes peuvent être divisées en deux grandes catégories: 1) La synthèse in situ qui consiste à construire pas à pas la molécule d'ON sur un support solide en utilisant le principe de la synthèse par la voie des phosphoramidites. Cette méthode, décrite notamment dans la demande internationale WO 97/39151 permet la préparation de surfaces à hautes densités en ON. En outre, par un jeu de caches et l'utilisation de groupes protecteurs photolabiles, elle permet l'adressage des différents ON sur le support. Néanmoins, cette méthode présente un certain nombre de désavantages majeurs. En particulier, les ON fixés sur le support ne peuvent pas être caractérisés et il est très difficile d'incorporer des ON porteurs de modifications. 2) La synthèse par déposition, ou ex situ, qui consiste, dans un premier temps, à préparer l'ON de manière conventionnelle, puis dans un second temps, à le fixer sur un support solide en utilisant une réaction chimique adaptée. Cette deuxième méthode présente notamment l'avantage de mettre en oeuvre des molécules d'ON qui peuvent être caractérisées avant leur fixation sur le support solide. L'Invention qui va être décrite ci-après, s'inscrit plus spécialement dans le cadre des méthodes de synthèse par déposition. Plusieurs types de méthodes de synthèse par déposition ont déjà été décrites dans l'art antérieur, notamment en ce qui concerne les différentes techniques permettant de localiser le greffage de l'ON. On peut, en premier, lieu mentionner les méthodes utilisant la voie électrochimique qui consistent à ancrer l'ON, préalablement fonctionnalisé par un groupement électroconducteur tel que par exemple par un groupement pyrrole, via 25 30 l'électropolymérisation du résidu pyrrolique. Ce type de méthode de déposition d'ON par voie électrochimique a notamment été décrit dans le brevet FR 2 703 359. Il présente néanmoins l'inconvénient de nécessiter l'emploi d'un support conducteur de l'électricité, ce qui complexifie le composant final. D'autre part, dans un composant de type "laboratoire sur puce" ("Lab On a Chip"), les différentes étapes de fabrication peuvent altérer la qualité des électrodes et donc leur fonctionnalité. On peut, en deuxième lieu, mentionner la voie photochimique qui semble être plus prometteuse car la gestion des surfaces et des solutions chimiques à mettre en oeuvre est externalisée. Deux approches ont été développées: i) le photogreffage direct entre la surface et la molécule cible. Dans ce cas, le photogreffage présente le désavantage de faire intervenir des réactions radicalaires peu sélectives; ii) la libération d'une fonction protégée par un groupement protecteur photolabile sur le support, pour permettre la réaction ultérieure avec l'ON cible pour conduire à sa fixation. Dans ce cas, les supports mis en oeuvre sont généralement fonctionnalisés par des agents de couplage qui sont des composés bifonctionnels comportant à une de leurs extrémités une fonction d'accrochage sur la surface du support et à l'autre extrémité une fonction réactive vis-à-vis d'une molécule cible comportant une fonction chimique complémentaire, ladite fonction réactive de l'agent de couplage étant protégée par un groupement photolabile. Cependant, pour être compétitive, cette dernière approche doit répondre à un certain nombre de critères. Ces critères sont les suivants: - la réaction entre le support activé et la molécule cible doit être rapide; cette réaction ne peut intervenir que lorsque que les fonctions réactives de l'agent de couplage ont été libérées de leur groupement protecteur (réaction d'activation) ; - le rendement de cette réaction doit être élevé ; - le procédé de synthèse permettant de préparer les agents de couplage doit être simple à mettre en oeuvre et comporter le moins d'étapes possible; 30 - l'utilisation de conditions de réactions douces (eau par exemple) ; - la liaison formée entre l'agent de couplage et la molécule cible doit être stable dans différentes conditions de température et de pH de façon à permettre une utilisation très souple du support ainsi fonctionnalisé. Or, il apparaît que les différentes méthodes proposées jusqu'à ce jour ne remplissent pas l'ensemble de ces critères de façon totalement satisfaisante, notamment en raison de la nature des différents agents de couplages utilisés. C'est pourquoi les Inventeurs se donnés pour but de pourvoir à de nouveaux agents de couplages bifonctionnels comportant une fonction réactive protégée par un groupement photolabile, qui soient faciles à synthétiser, selon un procédé comportant peu d'étapes et réalisable en conditions douces, ces agents de couplage pouvant avantageusement être utilisés pour fonctionnaliser des supports solides dans le but d'y fixer ensuite des molécules biologiques cibles. La présente Invention a donc pour premier objet un agent de couplage de formule (I) suivante: A-X-B-Proc (I) dans laquelle: - A représente une fonction d'accrochage sur un support solide; - X représente un bras espaceur; - B est une fonction réactive protégée par un groupement Proc; Proc est un groupement protecteur photolabile de formule (II) suivante: O dans laquelle: - R1 et R2, identiques ou différents, représentent un atome d'hydrogène ou un radical alkyle en C1-C4. Selon l'Invention, la fonction A est de préférence choisie parmi les fonctions de type amine, phosphoramidite, silane et ester activé. Cette fonction A sera choisie en fonction de la nature du support sur lequel les agents de couplage de formule (I) seront destinés à être fixés. Les fonctions de type ester activé sont de préférence des fonctions acides carboxyliques estérifiées par du N-hydroxysuccinimide, ou encore par tout autre réactif d'activation convenable et connu de l'Homme du métier tel que par exemple le pentafluorobenzène. Le bras espaceur X peut être de longueur et de polarité variables selon les propriétés finales souhaitées. Il peut par exemple être une chaîne hydrophobe non chargée (telle qu'une chaîne hydrocarbonée saturée) ou bien une chaîne hydrophile non chargée tel qu'un éther de glycol. Selon une forme de réalisation particulièrement préférée de l'Invention, le bras espaceur X est choisi parmi les chaînes hydrocarbonées saturées comportant de 1 à 13 atomes de carbone et les éthers de glycol dans lesquels la chaîne carbonée comporte de 4 à 12 atomes de carbone tels que le triéthylèneglycol (TEG) et l'hexaéthylèneglycol (HEG). La fonction réactive B est une fonction qui permet, après photodéprotection, la fixation covalente de molécules cibles porteuses d'au moins une fonction chimique complémentaire. Selon une forme de réalisation préférée de l'Invention, cette fonction réactive B est choisie parmi les groupements conduisant, après photo-déprotection, à une fonction de type oxyamine (-ONH2) et dérivés ou hydrazide (-NH-NH2) et dérivés. Ces fonctions seront aptes à interagir avec une fonction complémentaire portée par lesdites molécules cibles telle que les fonctions amines, les alcools, les thiols, les carboxyles, les carbonyles. On pourra trouver facilement, dans toute monographie de chimie organique, une liste plus exhaustive des paires de groupements fonctionnels complémentaires. Au sein des groupements protecteurs de formule (II) ci-dessus, et 30 lorsqu'ils représentent un radical alkyle, R, et R2, indépendamment l'un de l'autre, sont Feuille de remplacement de préférence choisis parmi les radicaux méthyle et éthyle; le radical méthyle étant tout particulièrement préféré. Parmi les agents de couplage de formule (I) ci-dessus, on préfère particulièrement ceux dans lesquels: i) - A représente une fonction phosphoramidite, - X représente une chaîne hydrocarbonée saturée ayant 6 atomes de carbone, - B représente une fonction oxyamine (-ONH-), et - RI et R2 représente un atome d'hydrogène ou un radical 10 méthyle; ii) - A représente une fonction trialcoxy(CI-C4)silane, - X représente une chaîne hydrocarbonée saturée ayant 3 atomes de carbone, - B représente une fonction oxyamine (-ONH-), et - RI et R2 représentent un atome d'hydrogène ou un radical méthyle; iii)- A représente une fonction carboxylique estérifiée par du N- hydroxysuccinimide ou du pentafluorobenzène, - X représente -CH2-, - B représente une fonction oxyamine (-ONH-), et - RI et R2 représentent un atome d'hydrogène ou un radical méthyle. Les agents de couplages de formule (I) ci-dessus peuvent être facilement préparés selon les principes de synthèse organique bien connus de l'homme 25 du métier et suivant la nature des fonctions A et B. Selon une première forme de réalisation de l'Invention, et lorsque l'agent de couplage est un composé de formule (I) dans lequel la fonction d'accrochage A est de type acide carboxylique activé sous forme d'ester de N-hydroxysuccinimide par exemple, et la fonction B est une fonction oxyamine, on utilise de préférence un procédé de préparation répondant au Schéma 1 suivant: SCHEMA 1, HOX ONH2.HCIH HOX,,, 0 P Protection (I) Dans ce schéma, Proc est un groupement protecteur photolabile de formule (II) telle que définie précédemment et X est un bras espaceur pouvant prendre les mêmes significations que celles indiquées précédemment. Selon ce schéma, un composé de formule (III) comportant une fonction carboxylique et une fonction oxyamine est, dans une première étape, protégé par un groupement protecteur photolabile Proc de formule (II) choisie, pour conduire à un composé de formule (IV), puis dans une deuxième étape, la fonction acide carboxylique du composé de formule (IV) est activée par du N-hydroxysuccinimide, pour conduire au composé de formule (I) attendu. Selon une deuxième forme de réalisation de l'Invention, et lorsque l'agent de couplage est un composé de formule (I) dans lequel la fonction d'accrochage A est une fonction phosphoramidite, et la fonction B est une fonction oxyamine, on utilise de préférence un procédé de préparation répondant au Schéma 2 suivant: SCHEMA 2, 1) Hydrazinolyse 2) ONH-protection A-X-B-P (I) Trityl-O X O NH P 1) O-déprotection 2) 0-phosphytilation Sur ce schéma, X et Proc ont les mêmes significations que celles 5 indiquées précédemment, B représente une fonction oxyamine et A désigne le groupement suivant: R R NN/ dans lequel R et R', identiques ou différents, représentent un radical alkyle ayant de 1 à 13 atomes de carbone. Selon ce schéma, on fait réagir, dans une première étape, un alcool halogéné de formule (V) dans lequel Halo représente un atome d'halogène tel que le brome, le chlore, l'iode ou le fluor, avec du Nhydroxyphtalimide (substitution nucléophile de l'atome d'halogène) pour obtenir un composé de formule (VI) qui, dans une deuxième étape, subit une hydrazinolyse afin de libérer la fonction oxyamine qui est ensuite protégée par un groupement protecteur Proc photolabile de formule (II) choisie pour conduire à un composé de formule (VII) qui, dans une troisième étape, subit une phosphytilation pour conduire au composé de formule (I) attendu. Selon une troisième forme de réalisation de l'Invention, et lorsque l'agent de couplage est un composé de formule (I) dans lequel la fonction d'accrochage 1) 0-tritylation 2) Halo-substitution HO X Halo Trityl-O X O N (V) A est de type silane et la fonction B est une fonction oxyamine, on utilise de préférence un procédé de préparation répondant au Schéma 3 suivant: SCHEMA 3 /ONH2 (IX) s \X/O Proc (X) NH 1 Hydrosilylation alkyleO (I) gis Oalkyle alkyleO NH Proc Selon ce procédé, on protège la fonction oxyamine d'un composé alcène de formule (IX) dans lequel X représente un bras espaceur pouvant prendre les mêmes significations que celles indiquées précédemment pour les agents de couplage de formule (I), pour obtenir un composé de formule (X) qui subit ensuite une hydrosilylation pour conduire à un composé de formule (I) dans lequel la fonction d'accrochage A est une fonction trialcoxy(CI-C4)silane. Les agents de couplage de formule (I) conformes à l'Invention peuvent être utilisés pour la fonctionnalisation de supports solides. La présente Invention a donc pour objet l'utilisation d'au moins un agent de couplage de formule (I) tel que défini précédemment, pour la fonctionnalisation de supports solides. L'utilisation des agents de couplage de formule (I) permet avantageusement de modifier rapidement la surface de supports solides par une couche stable porteuse de fonctions réactives facilement accessibles par photodéprotection. Ainsi, la présente Invention a également pour objet un procédé de préparation d'un support solide fonctionnalisé, caractérisé par le fait qu'il comporte au moins une étape de mise en contact d'au moins une surface d'un support solide avec une solution d'au moins un agent de couplage de formule (I) dans un solvant organique. Le solvant organique est de préférence choisi parmi les solvants non polaires tels que par exemple le trichloroéthylène, le diméthylformamide (DMF) et le cyclohexane. La mise en contact du support solide avec la solution de l'agent de couplage de formule (I) est de préférence réalisée à une température comprise entre 4 et 80 C environ, pendant 1 à 48 heures environ. Le substrat est ensuite rincé avec un ou plusieurs solvants, de préférence et successivement avec le solvant de réaction, de l'éthanol absolu et/ou du chloroforme, puis séché, de préférence à l'azote. Ce procédé présente l'avantage d'être simple à mettre en oeuvre et permet l'obtention d'une couche de bonne densité. Il permet notamment d'obtenir des supports solides comportant au moins une surface fonctionnalisée par une monocouche auto-assemblée de composés de formule (I) ("Self-AssembledMonolayer" : SAM). Les SAMs sont définies comme un assemblage de molécules dans lequel les molécules sont organisées, organisation due à des interactions entre les chaînes des molécules, donnant lieu à un film anisotrope stable, monomoléculaire et ordonné (A. ULMAN, Chem. Rev., 1996, 96, 1533-1554). Il est en particulier possible d'obtenir de telles SAMs lorsque l'on fonctionnalise la surface d'un support solide avec un agent de couplage de formule (I) conforme à l'Invention dans lequel la fonction d'accrochage A est une fonction de type silane, de préférence en solution à 10 mm environ dans un solvant tel que le trichloroéthylène et lorsque la mise en contact est réalisée à une température d'environ 4 C pendant environ 24 heures. Par ailleurs, les surfaces obtenues en mettant en oeuvre le procédé conforme à l'Invention présentent directement un grand nombre de fonctions réactives protégées par un groupement protecteur photolabile facile à enlever de façon sélective dans le temps et l'espace afin d'immobiliser, de façon covalente, des molécules biologiques d'intérêt comportant une fonction chimique complémentaire vis-à-vis de la fonction réactive B des agents de couplages présents à la surface du support solide. Les supports solides pouvant être fonctionnalisés par les agents de couplage de formule (I) conformes à l'Invention sont de préférence choisis parmi les supports de verre, de céramiques (de type oxyde), de silicium ou de plastique, lesdits supports comportant au moins une surface hydratée, hydroxylée, silanisée, aminée ou bien encore de type ester activé. De telles surfaces peuvent être aisément préparées selon les techniques bien connues de l'art antérieur de la technique. Il est par exemple possible de préparer un support solide comportant une surface hydroxylée par silanisation au moyen d'un silane époxyde qui subit ensuite une hydrolyse acide de façon à libérer les fonctions hydroxyle de la surface. Ces supports solides possèdent au moins une surface plane ou non, lisse ou structurée, et peuvent se présenter par exemple sous la forme de lame de verre, de plaque plastique plane ou à puits, de capillaire ou encore de bille poreuse ou non. Ainsi que décrit ci-dessus, la fonction d'accrochage A des agents de couplage de formule (I) est choisie en fonction de la nature de la surface du support sur laquelle ceux-ci sont destinés à être fixés. Ainsi lorsqu'il s'agit de supports comportant au moins une surface de type ester activé, alors la fonction A est de préférence une fonction amine; lorsqu'il s'agit de supports comportant au moins une surface de type hydroxyle, alors la fonction A est de préférence une fonction phosphoramidite ou silane; lorsqu'il s'agit de supports comportant au moins une surface de type hydrure, alors la fonction A est de préférence une fonction silane et lorsqu'il s'agit de supports comportant une surface aminé, alors la fonction A est de préférence une fonction ester activée. La présente Invention a donc également pour objet les supports solides comportant au moins une surface fonctionnalisée par un ou plusieurs agents de couplage de formule (I) tels que définis ci-dessus. De tels supports peuvent avantageusement être utilisés pour l'immobilisation de molécules biologique d'intérêt comportant une fonction chimique complémentaire vis-à-vis de la fonction réactive B des agents de couplage de formule (I) présents à la surface dudit support solide après leur déprotection, et en particulier pour l'immobilisation covalente de molécules d'acide nucléique telles que l'ADN et les oligonucléotides. Ainsi, la présente Invention a également pour objet l'utilisation d'un support solide tel que décrit ci-avant pour l'immobilisation covalente de molécules biologiques d'intérêt comportant une fonction chimique complémentaire vis-à-vis de la fonction réactive B des agents de couplage de formule (I) présents à la surface dudit support solide, et en particulier d'acides nucléiques (ADN, oligonucléotides) par formation d'une liaison amide (peptidique). La présente Invention a, en outre, pour objet un procédé d'immobilisation de molécules biologiques d'intérêt, et en particulier de molécules d'acide nucléique, sur un support solide tel que décrit ci-avant, caractérisé en ce qu'il comprend au moins une première étape de photo- déprotection des fonctions réactives B composés de formule (I) par insolation d'au moins une partie de la surface du support solide, puis la mise en contact du support solide ainsi activé avec une solution de molécules biologique d'intérêt, et en particulier de molécules d'acide nucléique, pour conduire à l'immobilisation desdites molécules par formation d'une liaison covalente entre au moins une fonction chimique portée par lesdites molécules et réactive vis-à-vis des fonctions réactives B desdits composés de formule (I) conforme à l'Invention, sur ledit support solide et la répétition éventuelle de ces deux étapes. En particulier, l'étape de photo-déprotection peut-être localisée sur seulement une partie de la surface fonctionnalisée du support solide et par exemple réalisée au travers d'un masque. Après insolation, la fonction réactive B des agents de couplage de formule (I) se trouve déprotégée (active), ce qui crée ainsi des zones portant la fonction réactive libre qui pourra capturer toute molécule en solution comportant une fonction chimique réactive vis-à-vis de ladite fonction réactive B activée présente à la surface du support solide. En particulier, l'étape d'immobilisation est réalisée par la formation de liaisons oxime entre les fonctions B oxyamine des composés de formule (I) et les fonctions carbonylées des molécules biologique d'intérêt, en particulier des molécules d'acide nucléique. Cette réaction présente l'avantage de pouvoir être réalisée dans des conditions douces, en particulier à un pH compris entre 4 et 7. La liaison formée (oxime) présente par ailleurs une grande stabilité et il n'est pas nécessaire de la stabiliser par une étape de réduction supplémentaire. La longueur d'onde d'insolation est de préférence comprise entre 300 et 400 nm. Les solutions de molécules biologiques d'intérêt peuvent être de simples solutions aqueuses ou bien des solutions de ces molécules dans des solutions aqueuses tamponnées. La durée de la mise en contact est de préférence comprise entre 5 et 60 minutes environ et réalisée à une température de préférence comprise entre 4 et 60 C environ. Enfin, l'Invention a également pour objet les supports solides (puces à acides nucléiques notamment) tels que décrits précédemment et obtenus en mettant en oeuvre le procédé d'immobilisation conforme à l'Invention, c'est-à-dire comportant au moins une surface sur laquelle lesdites molécules biologiques d'intérêt, et en particulier des molécules d'acide nucléique, sont immobilisées par l'intermédiaire d'une liaison covalente formée avec la fonction réactive B des agents de couplage de formule (I) conformes à l'Invention. Outre les dispositions qui précèdent, l'Invention comprend encore d'autres dispositions qui ressortiront de la description qui va suivre, qui se réfère à des exemples de préparation d'agents de couplage de formule (I), à des exemples de fonctionnalisation de supports solides en verre de type capillaire avec des agents de couplages de formule (1) conforme à l'Invention ainsi qu'à l'utilisation d'un support fonctionnalisé pour l'immobilisation d'oligonucléotides, ainsi qu'à la figure 1 annexée qui présente la photographie de la fluorescence émise par des oligonucléotides fixés sur un support solide de type capillaire selon le procédé conforme à l'Invention, après hybridation avec des oligonucléotides complémentaires marqués à l'aide d'un fluorophore. EXEMPLE 1: PREPARATION D'UN DERIVE PHOSPHORAMIDITE 25 CONFORME A LA FORMULE (I) O H iPr /iPr N NC\ \O/PO (6) 1) Première étape: Préparation du composé (1) : introduction de l'oxyamine O Une solution de N-hydroxyphtalimide (2,70 g; 16,6 mmoles) et de carbonate de potassium (4,6 g; 23,6 mmoles) dans 150 ml de diméthylformamide (DMF) a été chauffée à une température de 50 C sous argon pendant une heure sous agitation. On a ensuite ajouté du 6-bromohexanol (3 g; 16,6 mmoles), puis le mélange réactionnel a de nouveau été mis sous agitation pendant une nuit à une température de 50 C. Après filtration, le solvant a été évaporé sous pression réduite. On a ensuite ajouté au résidu ainsi obtenu 50 ml d'acétate d'éthyle puis la phase organique a été lavée avec de la soude 0,1 N, puis avec une solution aqueuse saturée en chlorure de sodium. La phase organique a ensuite été séchée sur sulfate de sodium anhydre puis évaporée. Le produit (1) a été obtenu sous la forme d'une poudre blanche (3,28 g; 12,5 mmoles; rendement 75 %) présentant un point de fusion compris entre 85 et 88 C. L'analyse en résonance magnétique nucléaire du proton (RMN -1H), effectuée à une longueur d'onde de 200 MHz dans du CDCL3 était la suivante: ppm = 1,30-1,90 (8H, m, 4 CH 2), 3,60 (2H, t, J = 13 Hz, CI120), 4,20 (2H, t, J = 13 Hz, CH ON), 7,70-7,90 (4H, m, Ar-H). SM (DCI, mode positif) : Mcalc 263 (C14H17N04), m/z = 281 20 [M+NH4]+ 2) Deuxième étape: Tritylation du composé (1) pour conduire au composé (2) HO (1) Trityl-O (2) A une solution du composé (1) obtenu ci-dessus à l'étape précédente (3,2 g; 12,5 mmoles) dans 75 ml de pyridine anhydre, on a ajouté du chlorure de trityle (4,2 g; 15 mmoles). La solution a été agitée sous argon pendant 1 nuit à température ambiante. 5 ml de méthanol ont ensuite été ajoutés lentement, puis le solvant a été évaporé sous pression réduite. Le résidu obtenu a alors été solubilisé dans 100 ml l'acétate d'éthyle, puis la phase organique a été lavée avec de l'eau puis avec une solution aqueuse saturée en chlorure de sodium. La phase organique a alors été séchée sur sulfate de sodium anhydre puis évaporée. Le produit brut a été purifiée par chromatographie sur gel de silice (éluant dichlorométhane/cyclohexane: 75/25, v/v). Le produit (2) a été obtenu sous la forme d'une poudre blanche (6,27 g, 12,4 mmoles; rendement 99 %) fondant à 106-107 C. L'analyse RMN-'H (200MHz, CDCL3) était la suivante: 6 ppm = 1,30-1,90 (8H, m, 4 CH2), 3,20 (2H, t, J = 13 Hz, CH2O), 4,20 (2H, t, J = 13 Hz, CH ON), 7,70-7,90 (4HAr, m, Ar-H-phtalimide), 7,20-7,40 (15H, m, Ar-H-trityle). SM (ESI, mode positif) : Mcaic = 505 (C33H31NO4), m/z = 528 [M+Na]+, mlz = 544 [M+K]+. 3) Troisième étape: Hydrazinolyse du composé (2) pour l'obtention du composé (3) Trityf-O ONH2 (3) Le composé (2) obtenu ci-dessus à la deuxième étape (6,27 g; 12,4 mmoles) a été solubilisé dans 50 ml de dichlorométhane et l'on a ajouté 780 mg d'hydrazine (24,8 mmoles). La solution obtenue a été portée au reflux pendant 1 heure et demie, puis filtrée et évaporée sous pression réduite. Le produit brut a été purifié par chromatographie sur gel de silice, avec comme éluant du dichlorométhane puis un mélange 95/5 (v/v) de dichlorométhane et de méthanol. On a obtenu le composé (3) sous la forme d'une huile (4,20 g; 11,2 mmoles) avec un rendement de 90 %. RMN-'H (200 MHz, CDC13) : 6 ppm = 1,30-1,80 (8H, m, 4 CH2), 3,10 (2H, t, J = 13 Hz, CH 20-Tri), 3,60 (2H, t, J = 13 Hz, CH2ON), 7,70-7,90 (15H, m, Ar-H-trityle). SM (ESI, mode positif) : Mca-c = 375 (C25H29NO2), m/z = 376 [M+H]+, m/z = 398 [M+Na]+, m/z = 414 [M+K]+. 4) Quatrième étape: Protection de l'oxyamine du composé (3) pour obtenir le composé (4) Trityl-O O (4) O N H Le composé (3) préparé ci-dessus à la troisième étape (4,20 g; 11,2 mmoles) a été dissous dans 100 ml de pyridine. On a ensuite ajouté, goutte à goutte, 50 ml d'une solution de dichlorométhane contenant 5,40 g (22,4 mmoles) de chloroformiate de 2-(2-nitrophényl)-propyle (Cl-NPPOC). Le mélange réactionnel a été agité pendant une heure à l'obscurité puis évaporé sous pression réduite. Le résidu obtenu a ensuite été solubilisé dans du dichlorométhane puis la phase organique a été lavée avec une solution aqueuse saturée en chlorure de sodium. La phase organique a été séchée sur sulfate de sodium anhydre puis évaporée. Le produit brut a été purifié par chromatographie sur gel de silice en utilisant le dichlorométhane comme éluant. Le produit (4) a été obtenu sous la forme d'une huile orange (5,80 g; 9,9 mmoles) avec un rendement de 89 %. RMN-1H (200 MHz, CDC13) : ppm = 1,30 (3H, d, J = 16 Hz, CH 3), 1,50-1,80 (8H, m, 4 CH 2), 3,0 (2H, t, J = 13 Hz, CH2O-Tri), 3,70 (2H, m, CH2ON, 1H, m, CH), 4,20 (2H, t, J = 13 Hz, CH OCO), 7,10-7,50 (15H, m, Ar-H-trityle) , 7,50-7,80 (4H, m, Ar-H NPPOC). SM (ESI, mode positif) : Mcalc = 582 (C35H38N206), m/z = 605 [M+Na]+, m/z = 621 [M+K]+. SM (ESI, mode négatif) : m/z = 581 [M-H]". 5) Détritylation du composé (4) pour obtenir le composé (5) HO CH3 NO2 (5) 5,80 g (9,90 mmoles) du composé (4) obtenu ci-dessus à l'étape précédente ont été dissous dans 50 ml d'une solution d'acidetrifluoroacétique à 20 % dans le dichlorométhane. Le mélange a été agité pendant 3 à 4 heures à température ambiante, puis évaporé sous pression réduite. Le résidu obtenu a été solubilisé dans 100 ml de dichlorométhane, puis la phase organique a été lavée avec une solution aqueuse saturée en NaCl. La phase organique a alors été séchée sur sulfate de sodium anhydre puis évaporée. Le produit brut a été purifié par chromatographie sur gel de silice en utilisant comme éluant du dichlorométhane puis un mélange dichlorométhane/méthanol 95/5 (v/v). Le composé (5) a été obtenu sous la forme d'une huile orange (3,0 g; 8,9 mmoles) avec un rendement de 90 %. RMN-'H (200 MHz, CDCI3) : 5 ppm = 1,30 (3H, d, J = 16 Hz, CH3), 1,50-1,80 (8H, m, 4 CH 2), 3,70 (2H, m, CH2ON, 1H, m, CH), 4,30 (2H, t, 15 CH OCO, 2H, t, CH OH), 7,50-7,80 (4H, m, Ar-H NPPOC). SM (DVI, mode positif) : Mcaic = 340 (C16H24N206), m/z = 454 [M+TFA]+. 6) Sixième étape: Phosphitylation du composé (5) pour conduire au composé (6) iPr\ /iPr N NC\ (6) Le composé (5) obtenu ci-dessus à l'étape précédente (0,90 g; 2,7 mmoles) a été solubilisé sous courant d'argon dans 15 ml de dichlorométhane, puis on a ajouté de la diisopropyléthylamine (DIEA) (0,56 ml, 3,2 mmoles), puis 0,72 ml de 25 2cyanoéthyldiisopropylchlorophosphoramidite (3,2 mmoles). Le mélange réactionnel a été agité à température ambiante pendant 4 heures, jusqu'à disparition du produit de départ. On a alors ajouté 40 ml de dichlorométhane, puis lavé la phase organique avec une solution d'hydrogénocarbonate de sodium saturée, puis avec une solution aqueuse saturée en NaCl. La phase organique a été séchée sur sulfate de sodium anhydre puis évaporée. Le produit brut a été purifié par chromatographie sur gel de silice en utilisant comme éluant du dichlorométhane puis un mélange dichlorométhane/méthanol 97/3 (v/v). Le composé (6) a été obtenu sous la forme d'une huile jaune (0,50 g; 1,0 mmoles) avec un rendement de 38 %. RMN-'H (200 MHz, CDC13) : 8 ppm = 1,20-1,50 (15H, m, 4 CH3), 1,50-1,85 (8H, m, 4 CH 2), 2,65 (2H, t, CH2CN) 3,80 (2H, m, CH2OH, 1H, m, CH, 4 H, m, 2 CHOP), 4,30 (2H, m, CH OCO, 2H, m, 2 CHN), 7,10-7,70 (4H Ar- H NPPOC). RMN- 31P (200 MHz, CDC13) : 8 ppm = 120 (2 diastéréo-isomères). EXEMPLE 2: PREPARATION D'UN DERIVE ESTER ACTIVE CONFORME 15 A LA FORMULE (I) (composé (8)) 1) Première étape: Préparation de l'acide précurseur (7) CH3 NO2 (7) Du chlorhydrate de carboxyméthoxylamine (1 g; 4,57 mmoles) a été dissous dans 25 ml d'une solution aqueuse de carbonate de sodium à 10 %. La solution a été refroidie à une température de 0 C et l'on a ajouté, goutte à goutte et sous agitation, 20 ml d'une solution de dioxane renfermant 2,20 g (9,1 mmoles) de chloroformiate de 2-(2-nitrophényl)- propyle (Cl-NPPOC). L'agitation a été maintenue pendant 2 à 3 heures à température ambiante. Le milieu réactionnel a été évaporé à (8) H 7N HO O O sec. Au résidu ainsi obtenu, on a ajouté 250 ml d'eau, puis on a lavé la phase aqueuse avec 200 ml d'éther diéthylique. La phase aqueuse a alors été acidifiée avec une solution d'acide chlorhydrique IN jusqu'à pH 3 et l'on a extrait avec trois fois 250 ml de dichlorométhane. Les phases organiques ont été réunies et séchées sur sulfate de sodium anhydre. Le produit brut a été purifié par chromatographie sur gel de silice en utilisant comme éluant du dichlorométhane puis un mélange dichlorométhane/méthanol 97/3 (v/v). Le composé (7) a été obtenu sous la forme d'une poudre blanche fondant entre 88 et 92 C (1,20 g; 4,0 mmoles), avec un rendement de 90 %. RMN-'H (200 MHz, CDCI3) : b ppm = 1,40 (3H, d, J = 16 Hz, CI13), 3,70 (1H, m, CH), 4,30 (2H, m, CH2O) 4,40 (s, 2H, COCH O), 7,30-7,60 (4H, m, Ar-H NPPOC). RMN-13C (300 MHz, CDC13) : S ppm = 18 (CH2), 33 (CH2), 67 (CH3), 70 (CH3), 75 (CH3), 123 (quat), 137 (quat), 138 (quat), 133 (quat), 136 (CH), 151 (CH), 159 (CH), 172 (CH), 173 (CH). SM (ESI, mode positif) : Mcaic = 298 (C12H14N207), m/z = 321 [M+Na]+, m/z = 337 [M+K]+. SM (ESI, mode négatif) : m/z = 297 [M-H]-, m/z = 595 [2M-H]". 2) Deuxième étape: préparation de l'ester activé N-hydroxysuccinimide (8) CH3 NO2 Il H CNZ O 20 O (8) L'acide (7) obtenu ci-dessus à l'étape précédente (1,20 g; 4,0 mmoles) a été dissous dans 15 ml de dichlorométhane anhydre, puis l'on a ajouté du dicyclocarbodiimide (DCC) (0,82 g; 4,4 mmoles) puis du Nhydroxysuccinimide (0,457 g; 4,4 mmoles). Le milieu réactionnel a été agité pendant une nuit. Après filtration, le solvant a été évaporé sous pression réduite. Le produit brut a été purifié par chromatographie rapide sur gel de silice en utilisant de l'acétate d'éthyle comme éluant. Le composé (8) a été obtenu sous la forme d'une poudre jaune (1,0 g; 2,68 mmoles) avec un rendement de 67 %. EXEMPLE 3: PREPARATION D'UN DERIVE ESTER DE FORMULE (I), ACTIVE AVEC DU PENTAFLUOROPHENOL (9) II O (9) 500 mg (1,6 mmoles) de composé (7) obtenu à la première étape de l'exemple 2 ci-dessus ont été dissous dans 5 ml de dichlorométhane, puis l'on a ajouté 372 mg (1,9 mmoles) de pentafluorophénol, puis goutte à goutte, 1 ml d'une solution de DCC (360 mg, 1,9 mmoles) dans le dichlorométhane. On a agité pendant 4 heures, puis le précipité de dicyclourée (DCU) formé a été filtré. Après évaporation du solvant, on a obtenu le composé (9) sous la forme d'une huile (740 mg, 1,9 mmoles), avec un rendement de 100 %. RMN-1H (200 MHz, CDC13) : ppm = 1,30 (3H, d, J = 16 Hz, 15 CH3), 3,70 (1H, m, CH), 4,30 (2 H, m, CH O) 4,70 (s, 2H, COCHZO), 7,30-7,70 (4H, m, Ar-H NPPOC). RMN-19F (200 MHz, CDCI3) : b ppm = -166,0 (1F, t), -164,0 (IF, d), -162,0 (1F, t), -157,0 (IF,t), -152,50 (IF, d). EXEMPLE 4: PREPARATION D'UN DERIVE TRIETHOXYSILANE DE 20 FORMULE (I) OEt 0 EtO Si ( OEt N O CH3 NO2 1) Première étape Préparation de la N-nitro-phényl- propyloxycarbonylallyloxyamine (10) H N 0 (10) A une solution de 3,250 g (29,6 mmoles; 1,1 équivalent) d'allyloxyamine commerciale dans 25 mI de pyridine anhydre refroidie à une température de 0 C, on a ajouté, goutte à goutte, 15 ml d'une solution de dichlorométhane renfermant 6 g (27 mmoles) de chloroformiate de 2-(2- nitrophényl)-propyle (Cl-NPPOC). Après 30 minutes d'agitation, le solvant a été évaporé puis coévaporé avec du toluène. Le produit brut réactionnel a été dissous dans de l'acétate d'éthyle. La phase organique a été lavée, séchée sur sulfate de sodium anhydre, puis évaporée à pression réduite. Le composé (10) a été obtenu après purification par chromatographie sur gel de silice en utilisant comme éluant un mélange acétate d'éthyle/hexane: 1/4 (v/v) (5,76 g), avec un rendement de 72 %. RMN-1H (200 MHz, CDC13) : S ppm = 1,40 (d, 6H, Si-CH2-CH3), 15 3,70 (q, 1H, Ar-CH-CH3), 4,30 (m, 4H, CH O, OCH2) 5,30 (dd, 2H, CH2), 5,90 (m, 1H, CH), 7,20 (s, 1H, NH), 7,30-7,80 (m, 4H, H-Ar). 2) Deuxième étape: Hydrosilylation pour conduire au composé (11) A une solution de 1,67 g (5,6 mmoles) du composé (10) obtenu ci-dessus à l'étape précédente dans 8 ml de triéthoxysilane, on a ajouté goutte à goutte 20 l de catalyseur de Karsted. Après une nuit d'agitation à une température de 60 C, le solvant a été évaporé par distillation sous vide. Le produit brut réactionnel a été purifié par chromatographie sur gel de silice en utilisant comme éluant un mélange acétate d'éthyle/hexane 1/4 (v/v) pour conduire au composé attendu (11) avec un rendement de 60 % (1,33 g). RMN 'H (200 MHz, CDC13) : ppm = 0,65 (m, 2H, CH2-Si), 1,20 (t, 3H, CH3CH2-O), 1,40 (d, 3H, CH3-CH) 1,70 (m, 3H, CH2, CH-CH3), 3,80 (m, 4H, O-CH -CH3, CH2-0), 4,30 (m, 2H, CH2-0-CO), 7,30-7,80 (m, 5H, NH, H-Ar). SM (électrospray, mode positif) : Mcalc = 444, m/e = 444,7 [M+H]+ Les exemples de préparation de supports solides qui suivent ont été réalisés avec les agents de couplage de formule (I) conformes à l'Invention, en format capillaire (capillaires de verre d'une longueur de 3 cm et d'un diamètre de 100 m). Il doit être bien entendu toutefois que ces exemples sont transposables en format plan sur d'autres types de support. EXEMPLE 5 PREPARATION D'UN SUPPORT SOLIDE FONCTIONNALISE AVEC UN AGENT DE COUPLAGE DE FORMULE (I) COMPORTANT UNE FONCTION D'ACCROCHAGE A DE TYPE SILANE Dans cet exemple le composé (11) tel que préparé ci-dessus à l'exemple 4 a été utilisé à titre d'agent de couplage de formule (I). L'obtention d'un support solide fonctionnalisé par le composé (11) se fait en une seule étape, en l'occurrence par l'étape dite de silanisation de la surface du support solide minéral (capillaire de verre) selon le schéma réactionnel ci-dessous: SiOH Silanisation Composé I 1 Support solide minéral O H Surface oxyamine photosensible CH3 NO2 Pour ce faire, un capillaire a été rempli avec une solution de soude à 6M dans un mélange 1/1 eau/éthanol et la solution a été laissée dans le capillaire durant 2 heures à température ambiante. On a ensuite rincé abondamment le capillaire avec de l'eau puis on l'a séché à l'azote. Le capillaire a ensuite été rempli avec une solution du composé (11) à 10 mm dans du trichloroéthylène et on a laissé agir durant une nuit à température ambiante. Le capillaire a ensuite été rincé abondamment avec du trichloroéthylène, de l'éthanol absolu puis du chloroforme et enfin séché à l'azote. On a ainsi obtenu un capillaire de verre dont la surface interne était fonctionnalisée par une couche de composé (11), c'est-à-dire une surface oxyamine photosensible. EXEMPLE 6 PREPARATION D'UN SUPPORT SOLIDE FONCTIONNALISE PAR UN AGENT DE COUPLAGE DE FORMULE (I) COMPORTANT UNE FONCTION D'ACCROCHAGE A DE TYPE ESTER ACTIVE Dans cet exemple le composé (8) tel que préparé ci-dessus à l'exemple 2, comportant une fonction d'accrochage A de type ester activé par NHS a 10 été utilisé à titre d'agent de couplage de formule (I). L'obtention d'un support solide fonctionnalisé par cet agent de couplage ester activé NHS se fait en deux étapes, selon le schéma réactionnel cidessous: SiOH Silanisation NH / NHZ Si Support solide aminé Support solide minéral Surface oxyamine photosensible selon lequel, dans une première étape, on transforme la surface minérale du support solide en une surface comportant des fonctions amine, et dans une deuxième étape on fait réagir lesdites fonctions amine de surface avec le composé (8). 1) Première étape: réalisation d'une surface comportant des fonctions amine Un capillaire de verre a été rempli avec une solution de soude à 6M dans un mélange 1/1 eau/éthanol et on a laissé la solution dans le capillaire durant 2 heures à température ambiante. On a rincé abondamment le capillaire avec de l'eau puis on l'a séché à l'azote. Le capillaire a ensuite été rempli avec une solution de triéthoxyaminopropyl-silane à 10 % dans l'éthanol à 95 et on a laissé la solution dans le capillaire durant une nuit à température ambiante. Le capillaire a ensuite été rincé avec de l'éthanol puis séché à l'azote. On a obtenu un capillaire dont la surface interne était recouverte de fonctions amine. 2) Deuxième étape: fonctionnalisation du support avec le composé (8) Le capillaire obtenu ci-dessus à la première étape a été rempli d'une 15 solution du composé (8) à 10 mm dans le diméthylformamide (DMF) et on a laissé la solution dans le capillaire durant 1 nuit à température ambiante. Le capillaire a ensuite été rincé avec du DMF puis de l'éthanol et enfin séché à l'azote. On a ainsi obtenu un capillaire de verre dont la surface interne était 20 fonctionnalisée par une couche de composé (8), c'est-à-dire une surface oxyamine photosensible. EXEMPLE 7: UTILISATION D'UN SUPPORT FONCTIONNALISE POUR L'IMMOBILISATION DE MOLECULES BIOLOGIQUES D'INTERET Dans cet exemple, le support solide obtenu ci-dessus à l'exemple 5 a été utilisé pour l'immobilisation d'oligonucléotides. Il doit être bien entendu toutefois que l'utilisation de ces supports pour l'immobilisation d'autres molécules biologiques d'intérêt est également valable. Dans le cas des oligonucléotides, le greffage de ces molécules et la mise en évidence de leur présence sur la surface du support solide sont composés de quatre étapes: (i) l'insolation: c'est l'étape qui permet de libérer localement la fonction réactive B sur la surface du support solide sous l'action de la lumière. Cette fonction B va permettre le greffage de la biomolécule. (ii) l'immobilisation: c'est l'étape de greffage proprement dite de l'ON par l'intermédiaire de la réaction entre la fonction aldéhyde portée par l'ON et la fonction B photo-déprotégée à la surface du support solide après l'étape d'insolation. (iii) l'hybridation: c'est l'étape de mise en évidence du greffage ou non de l'ON désiré par l'intermédiaire de la reconnaissance de l'ON greffé sur la surface du support solide par son complémentaire portant un fluorophore. (iv) la détection de la fluorescence au scanner: c'est l'étape du traitement de tout signal émis par le fluorophore. I) Mode opératoire: 1) Etape d'insolation Le capillaire fonctionnalisé par le composé (11) et tel que préparé ci- dessus à l'exemple 5 a été rempli d'un mélange 1/1 de pyridine/eau. On a ensuite procédé à une insolation du capillaire à différents endroits choisis de celui-ci durant 5 secondes, à l'aide d'un insolateur à rayonnements ultraviolet A (UVA) à une longueur d'onde de 365 nm, en ajustant la taille de la fente à 160 m, avec une intensité de 4 mW/mm2 ledit insolateur étant équipé d'une lampe de 100 W. Le capillaire a ensuite été rincé à l'eau puis séché à l'azote. 2) Etape d'immobilisation des ON Le capillaire ainsi traité selon la première étape a été incubé avec une solution d'ON portant une fonction aldéhyde à 10 M dans de l'eau et on a laissé agir pendant 30 minutes. Le capillaire a ensuite été rincé à l'eau, puis avec une solution de laurylsulfate de sodium à 0,2 %, puis de nouveau à l'eau et enfin séché à l'azote. 3) Etape d'hybridation Le capillaire sur lequel ont été immobilisés les ON conformément à l'étape 2) ci-dessus a été rempli avec une solution d'ON complémentaires portant le fluorophore CY3 et on laissé agir pendant 1 heure à une température de 40 C. Le capillaire a ensuite été rincé avec une solution de citrate de sodium à 0,2 %. 4) Etape de lecture Le capillaire sur lequel les ON marqués au fluorophore se sont hybridés conformément à l'étape 3) ci-dessus a été placé sur une lame de verre puis introduit dans un lecteur de fluorescence vendu par la société Genomic's Solution. La même mesure a également été réalisée sur un capillaire témoin (type b/) ayant subi les mêmes traitements que ceux décrits ci-dessus pour le capillaire test (type a/) sauf l'étape de fonctionnalisation par les agents de couplage de formule (I). III RESULTATS L'image de la fluorescence obtenue est représentée sur la figure 1 annexée sur laquelle on peut constater que seuls les endroits ayant été insolés sont fluorescents. On voit par ailleurs que seul le capillaire fonctionnalisé par les agents de couplage de formule (I) conforme à l'Invention (type ai) comporte des segments fluorescents correspondant à l'immobilisation photo-localisée des ON désirés, le capillaire non fonctionnalisé (type b/) étant totalement non fluorescent. Cet exemple démontre que les supports solides conformes à l'Invention peuvent être avantageusement utilisés pour l'immobilisation de molécules d'intérêt de façon spécifique et localisée. REVENDICATIONS 1. Agent de couplage de formule (I) suivante: A-X-B-Proc (I) dans laquelle: - A représente une fonction d'accrochage sur un support solide, ladite fonction étant choisie parmi les fonctions de type amine, phosphoramidite, silane et ester activé ; - X représente un bras espaceur; - B est une fonction réactive choisie parmi les groupements conduisant, après photo-déprotection, à une fonction de type oxyamine (-ONH2) et dérivés ou hydrazide (-NH-NH2) et dérivés, ladite fonction B étant protégée par un groupement Proc; - Proc est un groupement protecteur photolabile de formule (II) 15 suivante: 10 /O dans laquelle: - RI et R2, identiques ou différents, représentent un atome d'hydrogène ou un radical alkyle en C1-C4. 2. Agent de couplage selon la revendication 1, caractérisé par le fait que le bras espaceur X est une chaîne hydrophobe non chargée ou une chaîne hydrophile non chargée. 3. Agent de couplage selon la revendication 2, caractérisé par le fait que le bras espaceur X est choisi parmi les chaînes hydrocarbonées saturées comportant de 1 à 13 atomes de carbone et les éthers de glycol dans lesquels la chaîne carbonée comporte de 4 à 12 atomes de carbone. 4. Agent de couplage selon l'une quelconque des revendications Feuille de remplacement précédentes, caractérisé par le fait que RI et R2, indépendamment l'un de l'autre, représentent un radical alkyle choisi parmi les radicaux méthyle et éthyle. 5. Agent de couplage selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé par le fait qu'il est choisi parmi ceux dans lesquels: i) - A représente une fonction phosphoramidite, - X représente une chaîne hydrocarbonée saturée ayant 6 atomes de carbone, - B représente une fonction oxyamine (-ONH-), et - Ri et R2 représente un atome d'hydrogène ou un radical méthyle; ii) - A représente une fonction trialcoxy(C1-C4)silane, - X représente une chaîne hydrocarbonée saturée ayant 3 atomes de carbone, - B représente une fonction oxyamine (-ONH-), et - RI et R2 représente un atome d'hydrogène ou un radical méthyle; iii)A représente une fonction carboxylique estérifiée par du Nhydroxysuccinimide ou du pentafluorobenzène, - X représente -CH2-, - B représente une fonction oxyamine (-ONH-), et - RI et R2 représente un atome d'hydrogène ou un radical méthyle. 6. Utilisation d'au moins un agent de couplage de formule (I) tel que défini à l'une quelconque des revendications I à 5, pour la fonctionnalisation de supports solides. 7. Procédé de préparation d'un support solide fonctionnalisé caractérisé par le fait qu'il comporte au moins une étape de mise en contact d'au moins une surface d'un support solide avec une solution, dans un solvant organique, d'au moins un agent de couplage de formule (I) tel que défini à l'une quelconque des revendications 1 à 5. 8. Procédé selon la revendication 7, caractérisé par le fait que la mise en contact du support solide avec la solution d'agent de couplage de formule (I) Feuille de remplacement est réalisée à une température comprise entre 4 et 80 C pendant 1 à 48 heures. 9. Procédé selon la revendication 7 ou 8, caractérisé par le fait que le support solide est choisi parmi les supports de verre, de céramiques, de silicium ou de plastique, lesdits supports comportant au moins une surface hydratée, hydroxylée, silanisée, aminée ou de type ester activé. 10. Procédé selon l'une quelconque des revendications 7 à 9, caractérisé par le fait que le support possède au moins une surface plane ou non, lisse ou structurée, et se présente sous la forme de lame de verre, de plaque plastique plane ou à puits, de capillaire ou de bille poreuse ou non. 11. Support solide caractérisé par le fait qu'il comporte au moins une surface fonctionnalisée par un ou plusieurs agents de couplage de formule (I) tels que définis à l'une quelconque des revendications 1 à 5. 12. Utilisation d'au moins un support solide tel que défini à la revendication I I pour l'immobilisation covalente de molécules biologiques d'intérêt comportant une fonction chimique complémentaire vis- à-vis de la fonction réactive B des agents de couplage de formule (I) présents à la surface dudit support solide. 13. Utilisation selon la revendication 12, caractérisée par le fait que les molécules biologiques d'intérêt sont des molécules d'acide nucléique. 14. Procédé d'immobilisation de molécules biologiques d'intérêt sur un support solide tel que défini à la revendication 13, caractérisé en ce qu'il comprend au moins une première étape de photo-déprotection des fonctions réactives B composés de formule (I) par insolation d'au moins une partie de la surface du support solide, puis la mise en contact du support solide ainsi activé avec une solution de molécules biologiques d'intérêt, pour conduire à l'immobilisation desdites molécules par formation d'une liaison covalente entre au moins une fonction chimique portée par lesdites molécules et réactive vis-à-vis des fonctions réactives B desdits composés de formule (I), sur ledit support solide et la répétition éventuelle de ces deux étapes. 15. Procédé selon la revendication 14, caractérisé par le fait que l'étape de photo-déprotection est localisée sur seulement une partie de la surface fonctionnalisée du support solide. 16. Procédé selon la revendication 14 ou 15, caractérisé par le fait que l'étape d'immobilisation est réalisée par la formation de liaisons oxime entre les Feuille de remplacement fonctions B oxyamine des composés de formule (I) et les fonctions carbonylées des molécules biologiques d'intérêt. 17. Procédé selon la revendication 16, caractérisé par le fait que l'étape d'immobilisation est réalisée à un pH compris entre 4 et 7. 18. Procédé selon l'une quelconque des revendications 15 à 17, caractérisé par le fait que la longueur d'onde d'insolation est comprise entre 300 et 400 nm. 19. Support solide caractérisé par le fait qu'il est obtenu selon le précédé tel que défini à l'une quelconque des revendications 14 à 18 et par le fait qu'il comporte au moins une surface sur laquelle des molécules biologique d'intérêt sont immobilisées par l'intermédiaire d'une liaison covalente formée avec la fonction réactive B des agents de couplage de formule (I) tels que définis à l'une quelconque des revendications 1 à 5. Feuille de remplacement