Brevet FR2877350A1 — publié le 20060505

IDENTIFICATION ET UTILISATION DE miRNAs IMPLIQUÉS DANS LA DIFFÉRENCIATION DE CELLULES ISSUES D'UNE LEUCÉMIE MYÉLOÏDE La présente invention est relative à un procédé pour identifier des agents thérapeutiques pour le traitement de la leucémie myéloïde, à un procédé pour identifier des miRNAs impliqués dans la différenciation de cellules leucémiques myéloïdes et à l'utilisation de miRNAs ou de séquences complémentaires à des miRNAs pour fabriquer un médicament destiné au traitement de la leucémie myéloïde. Le terme RNA silencing est relatif à des mécanismes de répression de l'expression d'un gène médiés par un ARN et utilisant des interactions séquence spécifique. Chez les plantes et les animaux, il existe notamment deux voies distinctes de régulation post-transcriptionnelle de l'expression génique qui utilisent deux types différents de petits ARNs. D'une part, on trouve les siRNAs (short interfering RNA) qui sont de petits ARNs double brin (ARNdb) de 21 à 26 nucléotides (nt) de longueur et qui agissent comme des médiateurs séquence spécifique pour la dégradation d'ARNm au cours du mécanisme d'ARN interférence (RNAi). Chez la Drosophile, ces siRNAs sont dérivés d'ARNdb par l'action d'une enzyme de type RNAse III appelée DICER. Les siRNAs formés vont alors s'associer au complexe protéique RISC (RNAInduced Silencing Complex) qui possède une activité endonucléase. Le complexe RISC/'siRNA formé va alors pouvoir couper de façon spécifique les molécules d'ARN cytoplasmique qui présentent une identité de séquence avec le siRNA présent dans le complexe. Chez les plantes et les animaux, ce mécanisme joue un rôle défensif important. Ce mécanisme, en réprimant la prolifération des éléments transposables, est également impliqué dans le maintien de l'intégrité du génome. D'autre part, on trouve également les miRNAs (micro RNAs) qui sont de petits ARNs simple brin extrêmement conservés au cours de l'évolution et qui ont une longueur d'environ 20 nucléotides. Les miRNAs sont générés comme les siRNAs, à savoir à partir d'un précurseur double brin maturé par l'enzyme DICER. Un même précurseur ARN code pour plusieurs miRNAs. Ainsi, les miRNAs miR-19b, miR-92, miR-17, miR-18, miR-19a, miR-19b, miR- 20 et miR-91 sont codés par le même précurseur ARN. De même, les miRNAs miR-23 miR-24 et miR-27 sont également codés par un même précurseur ARN. Toutefois, les miRNAs présentent néanmoins un certain nombre de différences avec les siRNAs. Ainsi, les miRNAs sont des molécules simple brin alors que les siRNAs sont des molécules doubles brins. Bien que le miRNA miR-196 soit capable de cliver l'ARNm Hox8 (YEKTA et al., Science, vol.304, p:594- 596, 2004; MANSFIELD, Nat Genet., vol.36(10), p:1079-83, 2004), la majeure partie des miRNAs animaux n'induisent pas de clivage endonucléolytique des ARN ciblés. Au contraire, les miRNAs animaux inhibent en général la traduction des ARN ciblés en s'hybridant à leur séquence 3'UTR (région non traduite) via un mécanisme encore inconnu (pour une revue, voir BARTEL D.P., Cell, vol.116, p: 281-297, 2004). Pour autant les miRNAs animaux, à la différence des miRNAs végétaux présentent une homologie de séquence partielle avec leurs cibles qui pourrait justifier des différences de leur mode d'action. Enfin, à la différence des siRNAs, les miRNAs ne semblent pas impliqués dans des mécanismes de défense mais plutôt de développement, et plus particulièrement de différenciation. En effet, l'expression d'un miRNA spécifique (miR-181) dans des cellules souches hématopoïétiques en culture et in vivo augmente la:Fraction des lymphocytes B, ce qui suggère une implication de ce miRNA dans la différenciation des cellules hématopoïétiques en lymphocyte B (CHEN et al., Science, vol.303 (5654p, p:83-6). Une indication indirecte de l'importance des miRNAs dans les processus de développement chez l'animal est fournie par un arrêt de l'embryogenèse, lié à des défauts précoces du processus de différenciation, chez des souris dont le gène codant pour DICER a été muté (]BERSTEIN et al., Nat. Genet., vol.35, p:215-7, 2003). À partir de ces différentes observations, il a été proposé un modèle du mécanisme de développement dans lequel pour chaque type cellulaire particulier, et à un stade de développement déterminé, un ensemble de miRNAs spécifiques influence l'expression d'une fraction déterminée du transcriptome (BARTEL D.P., 2004, précité). Du fait du lien entre expression des miRNAs et les processus de différenciation, le profil d'expression des miRNAs au cours de la cancérogenèse suscite aujourd'hui un intérêt croissant. Il a ainsi été démontré que le miRNA let-7 est sous-exprimé dans les cancers des poumons humains et sa sur-expression dans une lignée cellulaire d'adénocarcinome de poumon inhibe la croissance cellulaire in vitro (TAKAMIZAWA et al., Cancer Res., vol.64, p:3753-3756, 2004). La leucémie est qualifiée de cancer du sang et se caractérise par une prolifération des leucocytes. La leucémie peut être aiguë et entraîner la mort du patient en quelques semaines ou quelques mois. Cette maladie peut évoluer sous une forme lymphocytaire ou sous une forme myéloïde selon l'origine des cellules. La forme lymphocytaire résulte d'une hyperprolifération des progéniteurs impliqués dans la voie de différenciation lymphoïde, alors que la forme myéloïde résulte d'une hyper-prolifération des progéniteurs impliqués dans la voie de différenciation myéloïde. Concernant plus particulièrement les leucémies myéloïdes, elles sont traitées par une combinaison de divers agents pharmacologiques qui permettent la différenciation et l'apoptose consécutive des cellules cancéreuses. Pour autant, il apparaît souvent des phénomènes de résistance au traitement, lesquels diminuent d'autant les chances de guérison du patient. La leucémie aiguë myéloïde de type 3 (LAM3) ou encore leucémie aiguë promyélocytaire (LAP) représente près de 10% des cas de leucémie aiguë myolécytaire. Les cellules cancéreuses issues de LAM3 se caractérisent par un blocage de la granulopoïèse (voie de différenciation des granulocytes) au stade promyélocyte (DE THE et CHELBI-ALIX, oncogene, vol. 20, p:7136-9, 2001). Les cellules bloquées à un stade précoce de différenciation continuent de proliférer et s'accumulent dans la moelle osseuse. Parfois, cette accumulation de cellules s'étend à la circulation sanguine périphérique provoquant le plus souvent la mort des patients par coagulation intra-vasculaire disséminée. Au niveau moléculaire, la translocation chromosomique t(15;17) est associée spécifiquement à ce type de leucémie et conduit à la l0 synthèse d'une protéine de fusion entre le récepteur a de l'acide rétinoïque (RARa) et la protéine PML. Cette protéine de fusion, baptisée PML-RARa interfère négativement avec le RARa. Cette interférence entraîne un blocage de la différenciation des cellules au stade promyélocyte. Le traitement clinique de cette leucémie utilise des agents induisant la différenciation cellulaire (BENOIT et al., Oncogene, vol.20, p:7161-7177, 2001). Un des agents thérapeutiques anticancéreux les plus utilisés pour le traitement de la LAM3 est l'acide rétinoïque tout trans ou ATRA. L'ATRA permet la rémission de la maladie en restaurant la différenciation des cellules leucémiques et en entraînant de façon consécutive leur mort par apoptose. Cependant, comme pour les autres leucémies myéloïdes, des phénomènes de résistance sont apparus montrant les limites de l'utilisation de l'ATRA seul en thérapie anti-cancéreuse. Différentes combinaisons sont actuellement à l'étude pour développer des protocoles plus efficaces. Par conséquent, il existe un besoin urgent d'identifier de nouvelles molécules présentant une action thérapeutique vis-à-vis des leucémies myéloïdes, de nouveaux protocoles de traitement efficaces et encore d'évaluer l'efficacité d'un traitement chez un patient atteint de leucémie myéloïde. De façon inattendue, les inventeurs ont pu démontrer que la différenciation de cellules cancéreuses issue d'une leucémie myéloïde s'accompagne d'une modification de l'expression des miRNAs, et en particulier que la différenciation de cellules cancéreuses issues d'une leucémie myéloïde aiguë de type 3 (LAM3) s'accompagne d'une modification de l'expression des miRNAs miR-17 (SEQ ID NO: 1, CAAAGUGCUUACAGUGCAGGUAGU) , miR-18 (SEQ ID NO: 2, UAAGGUGCAUCUAGUGCAGAUA), miR-19a (SEQ ID NO: 3, UGUGCAAAUCUAUGCAAAACUGA), miR-19b (SEQ ID NO: 4, UGUGCAAAUCCAUGCAAAACUGA), miR-20 (SEQ ID NO: 5, UAAAGUGCUUAUAGUGCAGGUA) et miR-92 (SEQ ID NO: 6, UAUUGCACUUGUCCCGGCCUGU) codés par un même précurseur ARN (cf. figure 1) de séquence SEQ ID NO: 7 (figure 2). Au regard de l'implication des miRNAs dans les processus de différenciation au cours de:L'embryogénèse, la corrélation existant entre l'expression des miRNAs et la différenciation de cellules dérivées de leucémie myéloïde suggère que les miRNAs sont également impliqués dans le mécanisme de différenciation des cellules dérivées de leucémie myéloïde. En conséquence, la présente invention a pour objet un procédé in vitro pour identifier des agents thérapeutiques ou des combinaisons d'agents thérapeutiques efficaces pour induire la différenciation de cellules leucémiques myéloïde, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes de: i) mise en culture de cellules issues d'une leucémie 25 myéloïde, ii) addition d'au moins un composé au milieu de culture de ladite lignée cellulaire, iii) analyse de l'évolution du niveau d'expression d'au moins un miRNA codé par le précurseur ARN de séquence 30 SEQ ID NO: 7 entre les étapes (i) et (ii), iv) identification des composés ou de combinaisons de composés entraînant une modification du niveau d'expression dudit miRNA entre les étapes (i) et (ii). L'étape (i) de mise en culture de cellules issues d'une leucémie myéloïde peut être effectuée selon les techniques bien connues de l'homme du métier. Des protocoles de mise en culture utilisables dans le procédé selon l'invention sont décrits notamment dans BENOIT et al.(2001, précité) . Selon un mode de réalisation préféré, le procédé selon l'invention permet d'identifier des agents thérapeutiques ou de combinaisons d'agents thérapeutiques efficaces pour traiter une leucémie myéloïde associée à un blocage de la granulopoïèse, et particulièrement pour traiter une leucémie myéloïde associée à un blocage au stade promyélocyte telle que la LAM3. Les cellules utilisées dans le procédé de l'invention peuvent alors être issues d'une leucémie myéloïde aiguë associée à un blocage de la granulopoïèse, et particulièrement d'une leucémie myéloïde associée à un blocage des cellules au stade promyélocyte telle que la LAM3. Avantageusement, les cellules utilisées peuvent être des cellules de la lignée cellulaire NB4 ou une lignée cellulaire dérivée de cette dernière, une telle lignée dérivée peut être choisie parmi les lignées cellulaires NB4-LR1 et NB4-LR2 (RUCHAUD et al., 1994, précité). Un protocole de mise en culture de la lignée cellulaire NB4 ou de ses lignées dérivées est notamment décrit dans BENOIT et al. (2001, précité). La lignée promyélocytaire humaine NB4 a été isolée à partir d'un prélèvement de moelle osseuse d'une patiente atteinte d'une leucémie aiguë promyélocytaire (BENOIT et al., 2001, précité). Ces cellules portent la translocation t(15; 17) et ont la capacité de se différencier en granulocytes neutrophiles sous l'effet de l'ATRA. Les lignées NB4-LR1 et NB4-LR2, qui sont dérivées de la lignée NB4, présentent une résistance à la différenciation induite par l'ATRA. Pour la lignée NB4-LR1, si la réponse transcriptionnelle à l'ATRA est maintenue, leur différenciation nécessite un traitement conjoint ATRA/AMPc. L'étude de ce mécanisme de résistance a permis d'identifier une altération des voies de signalisation membranaires dans cette lignée qui entraîne un blocage du processus de maturation normalement enclenché par l'ATRA. Pour la lignée cellulaire NB4-LR2, ses cellules expriment une protéine PMLRARa qui est tronquée dans sa partie RARa. Cette mutation qui est localisée dans le domaine de liaison à. l'acide rétinoïque de PML- RARa rend ces cellules insensibles à l'ATRA et à un mélange ATRA/AMPc. La restauration de la différenciation nécessite la coopération entre les voies de signalisation des réxinoïdes, tel que le F R 11237 ou le B M S 749 (agonistes stricts du RXR (nuclear retinoid X recept.or)), et de l'AMPc. Puisque le RARa n'est plus fonctionnel, il est également possible d'utiliser l'acide rétinoïque 9--cis, agoniste à la fois du RAR et du RXR, pour induire une différenciation RXR dépendante. Avantageusement encore, les cellules mises en culture à l'étape i) peuvent être issues d'un prélèvement, notamment d'un prélèvement sanguin, d'une personne atteinte de leucémie myéloïde. Des protocoles de mise en culture pour de telles cellules sont bien connus de l'homme du métier et sont décrits notamment dans LANOTTE et al.(Blood., vol.77, p: 1080-1086, 1991). Selon un mode de réalisation préféré de l'invention, le ou les composés qui peuvent être utilisés à l'étape (ii) du procédé selon l'invention peuvent être de toute nature, notamment protéique, glucidique ou lipidique. L'homme du métier peut ainsi tester simplement et rapidement dans le procédé selon l'invention des composés dont il envisage qu'ils pourraient présenter un effet sur la différenciation des cellules issues d'une leucémie myéloïde. Selon un autre mode de réalisation préféré de l'invention, le ou les composés utilisés clans l'étape (ii) du procédé selon l'invention peuvent être des agents thérapeutiques utilisés dans le traitement d'autres maladies, et plus particulièrement dans le traitement d'autres cancers. L'homme du métier peut ainsi tester simplement et rapidement dans le procédé selon l'invention des agents thérapeutiques connus dans le traitement d'autres pathologies et dont il envisage qu'ils pourraient présenter un effet sur la différenciation des cellules issues d'une leucémie myéloïde. Selon un autre mode de réalisation préféré de l'invention, le ou les composés utilisés dans l'étape (ii) du procédé selon l'invention peuvent être des agents thérapeutiques utilisés dans le traitement de la leucémie myéloïde. Le procédé selon l'invention permet alors de déterminer les doses et/ou les combinaisons optimales d'agents thérapeutiques pour obtenir une différenciation des cellules. A titre d'exemple de tels agents thérapeutiques, on peut citer notamment l'AMPc, l'arsenic, :Les interférons, le TNF, l'acide rétinoïque et les dérivés des rétinoïdes, tel que l'ATRA, et les réxinoïdes. Le composé ajouté à l'étape (ii) du procédé selon l'invention peut l'être directement au milieu de culture cellulaire à une concentration qui peut être comprise entre 1 pM et 1 M, de préférence entre 1 nM et 100 mM, et de manière particulièrement préférée entre 100 nM et:LmM. L'étape (iii) peut être effectuée selon les techniques d'analyse connues de l'homme du métier. Par exemple, cette étape peut utiliser la technique de northern blot, de protection à la Rnase, de RT-PCR quantitative ou encore utiliser des puces à ADN intégrant des oligonucléotides complémentaires à des miRNAs. De préférence, cette étape d'analyse peut utiliser la technique de northern blot selon le protocole décrit dans LLAVE et al. (Plant Cell., vol. 14, p: 1605-1619, 2002. Pour mettre en oeuvre une telle analyse, les ARN de cellules mises en culture à l'étape (i), avant et après l'addition d'un agent thérapeutique à l'étape (ii) peuvent être extraits selon des techniques d'extraction connues de l'homme du métier. En particulier, des prélèvements de cellules peuvent être effectués de façon journalière. Les ARN purifiés peuvent ensuite être déposés sur un gel d'électrophorèse. Après migration du gel d'électrophorèse et transfert des ARN sur membrane, la membrane peut être hybridée avec une sonde marquée, froide (biotine, etc.) ou radioactive (P32, P33, etc.), présentant une séquence complémentaire en tout ou partie avec le précurseur ARN de séquence SEQ ID NO:7, ou à au moins un miRNA codé par ce précurseur. La séquence de la sonde présente une longueur supérieure ou égale à 10 nucléotides, de préférence à 15 nucléotides, et de manière particulièrement préférée à 20 nucléotides. La séquence de la sonde est complémentaire en tout ou partie à la séquence de l'ARN précurseur SEQ ID NO:7, de préférence à la séquence d'au moins un miRNA codé par ce précurseur, et de manière particulièrement préférée à au moins un miRNA choisi parmi miR-17 (SEQ ID NO:1), miR-18 (SEQ ID NO:2), miR-19a (SEQ ID NO:3), miR-19b (SEQ ID NO:4), miR-20 (SEQ ID NO:5), miR-91 (SEQ ID NO:8, ACUGCAGUGAAGGCACUUGU) et miR-92 (SEQ ID NO:6). Après hybridation et lavage de la membrane, le signal d'hybridation correspondant au miRNA analysé peut être quantifié selon des techniques bien connues de l'homme du métier, notamment en utilisant un phosphoimager . Le signal d'hybridation obtenu avec une sonde complémentaire à ce miRNA peut ensuite être normalisé avec le signal d'hybridation obtenu avec une sonde complémentaire à un transcrit exprimé de façon constitutive dans les cellules, tel que l'ARN 28S. La valeur normalisée obtenue pour chaque prélèvement correspond au niveau d'expression du miRNA dans les cellules pour chaque condition testée. Selon un mode de réalisation particulier du procédé selon l'invention, les cellules utilisées à l'étape (i) peuvent être préalablement transfectées en utilisant des techniques connues de l'homme du métier par une construction contenant un gène rapporteur, tel que le gène de la GFP, et potentiellement un gène de résistance, tel qu'un gène de résistance à l'hygromycine ou à la néomycine. Le gène rapporteur contient en outre au moins une séquence complémentaire en tout ou partie à la séquence de l'ARN précurseur SEQ ID NO:7, de préférence à au moins une séquence d'un miRNA codé par ce précurseur, et de manière particulièrement préférée à au moins un miRNA choisi parmi miR-17 (SEQ ID NO:1), miR-18 (SEQ ID NO:2), miR-19a (SEQ ID NO:3), miR-19b (SEQ ID NO:4), miR-20 (SEQ ID NO:5), miR- 91 (SEQ ID NO:8) et miR-92 (SEQ ID NO:6). Avantageusement, lesdites séquences complémentaires ont une longueur comprise entre 10 et 100 nucléotides, de préférence entre 15 et 50 nucléotides, et de manière particulièrement préférée entre 18 et 25 nucléotides. Les protocoles permettant l'obtention d'une telle construction sont connus de:L'homme du métier; un tel protocole est notamment décrit pour les siRNAs dans MANSFIELD et al. (2004, précité). L'utilisation d'une telle construction permet de simplifier considérablement l'analyse du niveau d'expression des différents miARNs puisqu'elle ne nécessite pas l'extraction des ARN. En effet, il a été démontré qu'un miRNA animal est capable d'induire le clivage d'un ARN lorsque ce dernier présente une séquence parfaitement complémentaire au miRNA. L'expression du gène rapporteur, notamment la GFP, est alors conditionnée à l'expression du miRNA dont une séquence complémentaire est présente au sein de la séquence codant pour le gène rapporteur. Ainsi, selon que l'agent thérapeutique induise une diminution ou une augmentation du précurseur ARN ou d'au moins un miRNA codé par celui-ci, on observera une augmentation ou une diminution de l'expression du gène rapporteur respectivement. Le suivi de l'expression du gène rapporteur pourra se faire selon des techniques connues de l'homme du métier et notamment, dans le cas de la GFP, en suivant l'émission de fluorescence des cellules transfectées. L'étape (iv) consiste en l'identification des composés ou des combinaisons de composés entraînant une augmentation et/ou une diminution du niveau d'expression de l'ARN précurseur SEQ ID NO: 7, ou d'au moins un miRNA codé par ce précurseur, ou très particulièrement d'un miRNA choisi parmi miR-17 (SEQ ID NO:1), miR-18 (SEQ ID NO:2), miR-19a (SEQ ID 2877350 11 NO:3), miR-19b (SEQ ID NO:4), miR-20 (SEQ ID NO:5), miR-91 (SEQ ID NO:8) et miR-92 (SEQ ID NO:6). Selon un mode de réalisation particulier de l'invention, l'étape (iv) consiste en l'identification des composés ou des combinaisons de composés entraînant une augmentation du niveau d'expression d'au moins un desdits miRNAs. Dans ce mode de réalisation, l'augmentation du niveau d'expression d'au moins un desdits miRNAs peut apparaître entre l'addition de l'agent thérapeutique (JO) et le quatrième jour de traitement (J4), de préférence entre le ter et le 3ème jour de traitement. Selon un deuxième mode de réalisation de l'invention, l'étape (iv) consiste en l'identification des composés ou des combinaisons de composés entraînant une diminution du niveau d'expression d'au moins un desdits miRNAs. Dans ce mode de réalisation, la diminution du niveau d'expression d'au moins un desdits miRNAs peut apparaître entre le jour suivant l'addition de l'agent thérapeutique (J1) et le quatrième jour de traitement (J4), de préférence entre le 2ème et le 4eme jour de traitement. À titre d'exemple, la différenciation des cellules de la lignée cellulaire NB4 suite à un traitement à l'ATRA entraîne une augmentation spécifique du niveau d'expression des miRNAs miR-19b et miR-92 entre JO et J3, avec un maximum d'expression à J3, puis une diminution du niveau d'expression de ces mêmes miRNAs entre J3 et J4. Un deuxième objet de la présente invention est relatif à un procédé in vitro pour identifier des miRNAs associés à la différenciation de cellules dérivées d'une leucémie myéloïde, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes de: i) mise en culture d'une lignée cellulaire issue d'une leucémie myéloïde, ii) addition, dans le milieu de culture, d'au moins un composé induisant la différenciation de ladite lignée cellulaire, iii) analyse de l'évolution du niveau d'expression d'au:5 moins un miRNA, ou d'un précurseur de miRNAs entre les étapes (i) et (ii), iv) identification des miRNAs qui présentent une variation de leur profil d'expression au cours de la différenciation. L'étape de mise en culture (i) de cellules issues d'une leucémie myéloïde peut être effectuée comme décrit précédemment. Selon un mode de réalisation préféré, le procédé selon l'invention permet d'identifier des miRNAs dont l'expression est associée à la différenciation de cellules dérivées d'une leucémie myéloïde associée à un blocage de la granulopoïèse desdites cellules, de préférence associée à un blocage au stade promyélocyte telle que la:LAM3. Avantageusement, la lignée cellulaire issue d'une leucémie myéloïde associée à un blocage de la granulopoïèse peut être la lignée cellulaire NB4 ou des lignées dérivées de celle-ci, notamment les lignées NB4-LR1 et NB4-LR2 décrites précédemment. La mise en culture desdites lignées cellulaires peut s'effectuer comme décrit dans BENOIT et al.(2001, précité). L'étape (ii) d'addition de composés induisant la différenciation peut utiliser des agents thérapeutiques qui sont utilisés actuellement dans le traitement du cancer, et de préférence dans le traitement de la leucémie myéloïde. A titre d'exemple d'agents thérapeutiques utilisables dans l'étape (ii) du procédé selon l'invention, on peut citer notamment l'AMPc, l'arsenic, les interférons, le TNF, l'acide rétinoïque et les dérivés des rétinoïdes, tel que l'ATRA, les réxinoïdes. L'agent thérapeutique utilisé peut être ajouté directement au milieu de culture cellulaire à une concentration comprise entre 1 pM et 1 M, de préférence entre 1 nM et 100 mM, et de manière particulièrement préférée entre 100 nM et 1mM. Selon un mode de réalisation préféré du procédé selon l'invention, les composés inducteurs de la différenciation pour la lignée NB4 peuvent être choisis parmi l'ATRA et un mélange ATRA/AMPc. Pour obtenir une différenciation desdites cellules, la concentration d'ATRA utilisée peut être comprise entre 1 nM et 1 mM, de préférence entre 1.0 nM et 100!IM, de manière particulièrement préférée entre 100 nM et 10 M. L'ATRA peut aussi être utilisé en combinaison avec de l'AMPc présent à une concentration comprise entre 100 nM et 100 mM, de préférence entre 1 M et 10 mM, de manière particulièrement préférée entre 10 M et 1 mM. Selon un second mode de réalisation préféré de l'invention, un composé inducteur de la différenciation pour la lignée NB4-LR1 peut être un mélange ATRA/AMPc. Les concentrations préférées pour ces agents thérapeutiques sont les mêmes que celles décrites précédemment. Selon un troisième mode de réalisation préféré de l'invention, un composé inducteur de la différenciation pour la lignée NB4-LR2 peut être un mélange AMPc/réxinoïdes, tel qu'un mélange AMPc/F R 11237 ou AMPc/B M S 749, ou un mélange AMPc/acide rétinoïque 9-cis. Pour obtenir une différenciation desdites cellules, la concentration de réxinoïdes, tel que le F R 11237 ou AMPc/B M S 749, ou d' acide rétinoïque 9-cis peut être comprise entre 1 nM et 1 mM, de préférence entre 10 nM et 100 M, de manière particulièrement préférée entre 100 nM et 10 M. Les concentrations préférées pour l'AMPc sont les mêmes que celles décrites précédemment. 3.5 L'étape (iii) d'analyse peut être effectuée comme décrit précédemment, mais en utilisant comme sonde des séquences complémentaires à la séquence d'au moins un miRNA. Des séquences de miRNAs sont notamment décrites dans la demande WO 03/029459 ou sur le site internet http://www.sanger.ac. uk/Software/Rfam/mirna/index.shtml. A titre de contrôle interne, on pourra utiliser une sonde complémentaire en tout ou partie à la séquence de l'ARN précurseur SEQ ID NO:7, de préférence à au moins un miRNA codé par ce précurseur, et de manière particulièrement préférée à au moins un miRNA choisi parmi miR-17 (SEQ ID NO:1), miR-18 (SEQ ID NO:2), miR-19a (SEQ ID NO:3), miR-19b (SEQ ID NO:4), miR-20 (SEQ ID NO:5), miR-91 (SEQ ID NO:8) ou miR-92 (SEQ ID NO:6). L'étape (iv) consiste en l'identification des miRNAs qui 15 présentent une variation de leur profil d'expression au cours de la différenciation de la lignée cellulaire utilisée. Selon un mode de réalisation préféré, l'étape (iv) consiste en l'identification des miRNAs qui présentent un profil d'expression identique ou similaire à au moins un miRNA codé par l'ARN précurseur SEQ ID NO:7, de préférence à au moins un miRNA choisi parmi miR-17 (SEQ ID NO:1), miR-18 (SEQ ID NO:2), miR-19a (SEQ ID NO:3), miR-19b (SEQ ID NO:4), miR-20 (SEQ ID NO:5), miR-91 (SEQ ID NO:8) ou miR- 92 (SEQ ID NO:6). Par miRNA présentant un profil d'expression identique à celui d'au moins un miRNA codé par l'ARN précurseur SEQ ID NO:7, on entend un miRNA dont les variations de niveau d'expression suivent la même cinétique et avec la même amplitude que celles d'au moins un miRNA codé par l'ARN précurseur SEQ ID NO:7 au cours de la différenciation des cellules de la lignée cellulaire utilisée, et notamment des cellules de la lignée cellulaire NB4 ou d'une lignée cellulaire dérivée de celle-ci. Par miRNA présentant un profil d'expression similaire à celui d'au moins un miRNA codé par l'ARN précurseur SEQ ID NO:7, on entend un miRNA dont les variations de niveau d'expression suivent une cinétique décalée de quelques jours, typiquement d'un jour ou deux, et/ou avec une amplitude supérieure ou inférieure aux variations de niveau d'expression d'au moinsun miRNA codé par l'ARN précurseur SEQ ID NO:7 au cours de la différenciation des cellules de la lignée cellulaire NB4 ou d'une lignée cellulaire dérivée. Selon un mode de réalisation préféré de l'invention, les miRNAs identifiés présentent une augmentation de leur niveau d'expression en réponse à l'addition d'un agent thérapeutique inducteur de la différenciation, tel que 1.'ATRA ou un mélange ATRA/AMPc, entre le jour du traitement (JO) et le quatrième jour de traitement (J4), de préférence entre le premier et le troisième jour de traitement avec ledit agent thérapeutique. Selon un deuxième mode de réalisation préféré de l'invention, les miRNAs identifiés présentent une diminution de leur niveau d'expression en réponse à l'addition d'un agent thérapeutique inducteur de la différenciation, tel que l'ATRA, entre le deuxième (J2) et le quatrième jour de traitement (J4) de traitement avec ledit agent thérapeutique. Un troisième objet de la présente invention est relatif à l'utilisation, pour fabriquer un médicament destiné au traitement de la leucémie myéloïde, d'au moins une molécule d'acides nucléiques présentant une séquence choisie parmi: i) la séquence d'un miRNA associé à la différenciation de cellules dérivées d'une leucémie myéloïde, la séquence dérivée d'un tel miRNA, ii) la séquence complémentaire d'un tel miRNA et la séquence dérivée d'une telle séquence complémentaire. Selon un mode de réalisation préféré de l'invention, l'invention a pour objet l'utilisation, pour fabriquer un médicament destiné au traitement de la leucémie myéloïde, d'au moins une molécule d'acides nucléiques présentant une séquence choisie parmi: i) la séquence d'un miRNA susceptible d'être identifié par le procédé in vitro d'identification des miRNAs associés à la différenciation de cellules dérivées d'une leucémie:> myéloïde, la séquence dérivée d'un tel miRNA, ii) la séquence complémentaire d'un miRNA susceptible d'être identifié par le procédé in vitro d'identification des miRNAs associés à la différenciation de cellules dérivées d'une leucémie myéloïde et une séquence dérivée d'une telle séquence complémentaire. Selon un autre mode de réalisation préféré de l'invention, l'invention a pour objet l'utilisation, pour fabriquer un médicament destiné au traitement de la leucémie myéloïde, d'au moins une molécule d'acides nucléiques présentant une séquence choisie parmi: i) la séquence d'un miRNA codé par l'ARN précurseur SEQ ID NO:7, une séquence dérivée d'un tel miRNA, ii) la séquence complémentaire d'un miRNA codé par l'ARN 20 précurseur SEQ ID NO:7 et une séquence dérivée d'une telle séquence complémentaire. Avantageusement, l'invention a pour objet l'utilisation, pour fabriquer un médicament destiné au traitement de la 25 leucémie myéloïde, d'au moins une molécule d'acides nucléiques présentant une séquence choisie parmi: i) la séquence de miR-17 (SEQ ID NO:1), une séquence dérivée de miR-17, la séquence complémentaire de miR-17, une séquence dérivée d'une telle séquence complémentaire, ii) miR-18 (SEQ ID NO:2), une séquence dérivée de miR- 18, la séquence complémentaire de miR-18, une séquence dérivée d'une telle séquence complémentaire, iii) miR-19a (SEQ ID NO:3), une séquence dérivée de miR-19a, la séquence complémentaire de miR-19a, une séquence 35 dérivée d'une telle séquence complémentaire, iv) miR-19b (SEQ ID NO:4), une séquence dérivée de miR-19b, la séquence complémentaire de miR-19b, une séquence dérivée d'une telle séquence complémentaire, v) miR-20 (SEQ ID NO:5), une séquence dérivée de miR-20, la séquence complémentaire de miR-20, une séquence dérivée d'une telle séquence complémentaire, vi) miR91 (SEQ ID NO:8), une séquence dérivée de miR-5 91, la séquence complémentaire de miR-91, une séquence dérivée d'une telle séquence complémentaire, vii) miR-92 (SEQ ID NO:6), une séquence dérivée de miR-92, la séquence complémentaire de miR-92 et une séquence dérivée d'une telle séquence complémentaire. De préférence, l'invention a pour objet l'utilisation d'au moins une desdites molécules d'acides nucléiques, pour fabriquer un médicament destiné au traitement d'une leucémie myéloïde associée à un blocage de la granulopoïèse, et de manière particulièrement préférée à un blocage au stade promyélocytes, telle que la LAM3. Les molécules d'acides nucléiques peuvent être utilisées sous forme simple brin ou double brin. Le miRNA en tant que tel est généralement sous forme simple brin, alors que le précurseur ARN est lui généralement sous une forme au moins partiellement double brin du fait des appariements entre ses séquences complémentaires. Les molécules d'ADN codant pour le précurseur ARN ou pour le miRNA se trouvent elles sous forme double brin. Les acides nucléiques peuvent être sélectionnés parmi l'ADN, l'ARN ou les acides nucléiques modifiés tels que les ribonucléotides ou les désoxyribonucléotides présentant un groupement sucre ou un groupement carboné modifié. Les molécules d'ARN ou d'ADN utilisées dans la présente invention peuvent également contenir un ou plusieurs nucléotides modifiés, c'est-à-dire un ribonucléotide ou désoxyribonuléotide naturel substitué par un analogue synthétique d'un nucléotide. De tels analogues de nucléotides peuvent par exemple être localisés à l'extrémité 3' ou 5' de la molécule d'acide nucléique. Des analogues synthétiques de nucléotides préférés sont sélectionnés parmi les ribonucléotides présentant un groupement sucre ou groupement carboné modifié. De préférence, les ribonucléotides présentant un groupement sucre modifié présentent un groupement 2'-OH remplacé par un groupement sélectionné parmi un atome d'hydrogène, un halogène, un groupement OR, R, SH, SR, NH2, NHR, NR2 ou CN, dans lequel R est un groupement alkyle, alcényle ou alcynyle de 1 à 6 carbone et l'halogène est le fluor, le chlore, le brome ou l'iode. De préférence, les ribonucléotides présentant un groupement carboné modifié ont leur groupement phosphoester lié au ribonucléotide adjacent qui est remplacé par un groupement modifié tel qu'un groupement phosphthioate. Pour autant, il est également possible d'utiliser des ribonucléotides présentant un noyau purine ou pyrimidine modifié. Comme exemples de tels noyaux modifiés, on citera notamment les uridines ou les cytidines modifiées en position 5, telles que la 5-(2-amino)propyl uridine et la 5-bromo uridine, les adénosines et guanosines modifiées en position 8, telle que la 8-bromo guanosine, les nucléotides déazotés, telle que la 7-déaza-adénosine, les nucléotides Net O-alkylés, telle que la N6- méthyl adénosine. Ces différentes modifications peuvent également être combinées. Les molécules d'acide nucléique utilisées dans la présente invention peuvent être obtenues par des méthodes de synthèse chimique ou par des méthodes de biologie moléculaire, notamment par transcription à partir de matrices ADN ou de plasmides isolés à partir de microorganismes recombinants. De préférence, cette étape de transcription utilise des ARN polymérase de phage telles que l'ARN polymérase T7, T3 ou SP6. Par séquence dérivée, on entend une séquence présentant une identité d'au moins 80%, de préférence d'au moins 90%, et de manière particulièrement préférée d'au moins 95% avec une séquence de référence. La détermination d'une identité de séquence est effectuée selon la formule suivante: I= n / L Où I représente l'identité en pourcentage (%), n est le nombre de nucléotides identiques entre une séquence donnée et une séquence de miRNA donnée et L est la longueur de la séquence. Les nucléotides A, C, G et U peuvent correspondre à des ribonucléotides, des déoxyribonucléotides et/ou à des analogues de nucléotides, comme des analogues synthétiques de nucléotide. En outre, les nucléotides peuvent être substitués par des nucléotides formant des liaisons hydrogènes analogues avec une séquence nucléique complémentaire. Ainsi, le nucléotide U peut être substitué par un nucléotide T. Les molécules d'acides nucléiques utilisées pour fabriquer un médicament destinées au traitement de la leucémie myéloïde ont de préférence une longueur comprise entre 15 et 100 nucléotides, et de manière particulièrement préférée entre 18 et 80 nucléotides. Pour les molécules de miRNA matures, elles présentent une longueur comprise entre 19 et 24 nucléotides, et plus particulièrement de 21, 22 ou 23 nucléotides. Pour autant, il est possible d'utiliser un précurseur de miRNAs qui a généralement une longueur comprise entre 50 et 90 nucléotides, le plus souvent entre 60 et 80 nucléotides. Il faut préciser que le précurseur de miRNAs peut être obtenu à partir d'un transcrit primaire qui peut présenter une longueur supérieure à 100 nucléotides. L'administration des molécules d'acides nucléiques peut 30 être effectuée par des méthodes de transfert de gènes connues dans l'homme du métier. Des méthodes communes de transfert de gène incluent le phosphate de calcium, le DEAE-Dextran, l'électroporation, la microinjection, les méthodes virales et les liposomes cationiques (GRAHAM et VAN DER EB, Virol., vol.52, p:456, 1973; McCUTHAN et PAGANO, J. Natl. Cancer Inst., vol.41, p:351, 1968; CHU et al., Nucl. Acids Res., vol. 15, p:1311; FRALEY et al., J. Biol. Chem., vol.255, p:10431, 1980; CAPECCHI et al., Cell, vol. 22, p:479, 1980; FELGNER iet al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, vol.84, p:7413, 1988). Les molécules d'acides nucléiques à administrer peuvent être sous la forme d'une solution, notamment d'une solution injectable, d'une crème, d'un comprimé ou encore d'une suspension. Le support peut être tout support pharmaceutique. De préférence, on utilisera un support capable d'améliorer l'entrée des molécules d'acides nucléiques dans les cellules. De tels supports incluent notamment les liposomes, de préférence les liposomes cationiques. Les exemples qui suivent sont fournis à titre 15 d'illustration et ne sauraient limiter la portée de la présente invention. Exemple 1: Différenciation des cellules NB4 et NB4-LR1 en présence d'ATRA et/ou d'AMPc Les cellules de la lignée cellulaire NB4 et de la lignée cellulaire NB4-LR1, résistante à la maturation par l'ATRA seul, ont été cultivées comme décrit dans LANOTTE et al. (1991, précité) et dans RUCHAUD et al. (Proc. Natl. Acad. Sci., vol. 91, p:8428-8432, 1994). Les cellules ont ensuite été traitées pendant 4 jours en présence de 1p,M d'acide rétinoïque tout-trans (ATRA, SIGMA-ALRICH) seul ou additionné de 100 M d'un analogue d'AMPc (8-CPT-cAMP,, SIGMA-ALRICH). La prolifération cellulaire a été déterminée journellement par comptage des cellules en utilisant un compteur de cellules (BECKMAN COULTER FRANCE SA) du jour 0, suivant l'addition de l'agent thérapeutique, au jour 4. Les résultats montrent que les différents traitements induisent une diminution de la prolifération. Parallèlement, l'évolution de la différenciation a été déterminée journellement au cours du traitement. La différenciation granulocytique a été évaluée simultanément selon des critères morphologiques et biochimiques. L'analyse morphologique a été effectuée après une coloration de May-Grünwald. L'analyse biochimique a été effectuée par un test de coloration basé sur la réduction du NBT (nitro blue tetrazolium) qui permet de mesurer la capacité oxydative des cellules matures à réduire le colorant NBT. À cet effet, 0,5 à 1 x 105 cellules ont été centrifugées pendant 5 min à 190 g. le culot cellulaire a ensuite été repris dans 200 l de tampon salin phosphate (PBS) additionné de NBT (SIGMA ALDRICH, 1 mg/ml) et de PMA (Phorbol 12-myristate 13--acetate, SIGMA, 10-'M), puis a été incubé 20 minutes à 37 C. Les cellules ont ensuite été récoltées sur lames par centrifugation Cytospin , puis observées par microscopie par contraste de phase. Un minimum de 200 cellules par lame a été examiné sous microscope optique et un pourcentage de différenciation a été calculé sur la base du nombre de cellules NBT positives. Les résultats obtenus sont résumés dans le tableau I ci- dessous: Tableau I Lignée Traitement Évolution du pourcentage de cellules cellulaire différenciées au cours du traitement (en jours) 0 1 2 3 4 NB4 ATRA 0% 6% 20% 43% 95% ATRA+AMPc 0% 6% 30% 80% 100% NB4- LR1 ATRA 0% 0% 2% 5% 5% ATRA+AMPc 0% 5% 25% 75% 95% Les résultats montrent que le co-traitement ATRA/AMPc permet d'obtenir une différenciation des cellules NB4 et NB4-LR1. En revanche, seules les cellules de 1.a lignée cellulaire NB4 se différencient en présence de l'ATRA seul. Exemple 2: Expression des miRNA au cours de la différenciation des cellules NB4 induite par 1'ATRA Dans une première série d'expérience, l'expression de différents miRNAs a été évaluée au cours de la différenciation des cellules NB4 en présence ou en l'absence d'ATRA. L'expression des miRNAs suivants a notamment été déterminée: miR23 (SEQ ID NO: 9) AUCACAUUGCCAGGGAUUUCCA miRl9b (SEQ ID NO: 4) UGUGCAAAUCCAUGCAAAACUGA miR92 (SEQ ID NO: 6) UAUUGCACUUGUCCCGGCCUGU miRl9a (SEQ ID NO: 3) UGUGCAAAUCUAUGCAAAACUGA miR20 (SEQ ID NO: 5) UAAAGUGCUUAUAGUGCAGGUA miR17 (SEQ ID NO: 1) CAAAGUGCUUACAGUGCAGGUAGU miR18 (SEQ ID NO: 2) UAAGGUGCAUCUAGUGCAGAUA miR91 (SEQ ID NO: 8) ACUGCAGUGAAGGCACUUGU Les ARN totaux ont été extraits des cellules des lignées cellulaires NB4 traitées ou non à l'ATRA, aux mêmes intervalles de temps qu'à l'exemple 1, et en utilisant le kit Tri-Reagent (SIGMA) selon les instructions du fabricant. L'analyse par northern des ARN de faible poids moléculaire a été effectuée comme décrit dans LLAVE et al. (2002, précité). Toutes les expériences de northern ont été effectuées en double. Des oligonucléotides ADN complémentaires aux séquences des miRNAs analysés ont été marqués à leur extrémité avec de l'ATP Y-P32 en utilisant la polynucléotide kinase T4 (NEW ENGLAND BIOLABS) en suivant les instructions du fabricant. Les résultats obtenus ont montré une modulation du niveau d'expression des miRNA miR-19b, miR-23 (SEQ ID NO: 9) et miR-92 au cours de la différenciation des cellules NB4 en réponse au traitement à l'ATRA. Dans le cas de miR-23, son niveau d'expression augmente au cours du temps en réponse au traitement à l'ATRA. Le profil d'expression de miR-19b et de miR-92 diffère de celui de miR-23. Ce profil d'expression correspond à une première augmentation du niveau d'expression de miR-19b et miR-92, immédiatement après le traitement. (JO) avec ensuite un maximum d'expression au troisième jour de traitement. Finalement, le niveau d'expression de miR-19b et de miR-92 chute entre le 3ème et le 4eme jour de traitement (entre J3 et J4) alors que la différenciation des granulocytes est complète (cf. tableau I). En outre, le niveau d'expression de miR-19b et de miR-92 au 4ème jour de traitement est inférieur à leur niveau d'expression dans les cellules non traitées. Le fait que miR-19b et miR-92 soient codés par le même précurseur ARN (cf. figures 1 et 2) pourrait expliquer la similarité de leurs profils d'expression. Pour les autres miRNA étudiés, leur profil d'expression 15 était soit trop faible pour être détecté, soit inchangé entre les cellules NB4 traitées ou non à l'ATRA. Exemple 3: Expression des miRNA miR-17, miR-18, miR-20 et miR-19a, synthétisés à partir du même précurseur ARN que miR-19b et miR-92, au cours de la différenciation des cellules NB4 induite par l'ATRA Les miRNAs miR-19b et miR-92 appartiennent à un même précurseur ARN regroupant 7 miRNAs identifiés: miR-17, miR- 18, miR-19a, miR-19b, miR-20, miR-91 et miR-92 (cf. figure 2A de l'article). Un modèle pose que de tels miRNAs générés à partir d'un même précurseur ARN présentent un même profil d'expression (LEE et al., Embo J. , vol. 21, p: 4663-4670, 2002). Pour tester cette hypothèse, des expériences de northern blot ont été effectuées comme décrit à l'exemple 2 sur des cellules traitées ou non à l'ATRA. Les résultats obtenus montrent que le profil d'expression des miRNAs miR17, miR-18, miR-19a et miR-20 est identique à celui de miR-19b et de miR-92 au cours de la différenciation des cellules NB4 en réponse au traitement à 2877350 24 l'ATRA. Le profil d'expression de ces différents miRNAs correspond à une première augmentation de leur niveau d'expression immédiatement après le traitement ATRA (JO), un maximum d'expression au troisième jour de traitement, puis une diminution importante de leur niveau d'expression entre le 3ème et le 4eme jour de traitement (entre J3 et J4), alors que la différenciation des granulocytes est complète (cf. tableau I). En conséquence, les miRNAs miR-17, miR-18, miR-19a, miR-19b, miR-20 et miR-92 présentent un même profil d'expression au cours de la différenciation des cellules NB4, ce qui suggère que le profil d'expression de leur précurseur ARN est corrélé avec la différenciation des cellules NB4. Exemple 4: Expression des miRNA dans les cellules des lignées cellulaires NB4 et NB4-LR1 en réponse à un traitement à l'ATRA Pour établir formellement la corrélation entre l'expression des différents miRNAs identifiés et la différenciation en granulocytes, des cellules des lignées cellulaires NB4 et NB4-LR1 ont été cultivées en présence ou en l'absence d'ATRA comme décrit à l'exemple 1. Des expériences de northern ont été effectuées selon le protocole décrit à l'exemple 2. Les différentes expériences de northern ont été réalisées avec des sondes complémentaires aux miRNAs miR-17, miR-18, miR-19a, miR19b, miR-20, miR-23 et miR-92. Les résultats obtenus montrent que le profil d'expression de miR-23 est identique dans les cellules NB4 et NB4-LR1 en réponse à un traitement à l'ATRA. Le profil d'expression de miR-23 est donc corrélé au traitement à l'ATRA et non pas à la différenciation des cellules. En revanche, les résultats ont montré que les différents miRNAs miR-17, miR-18, miR-19a, miR19b, miR-20 et miR-92, lesquels sont codés par un même précurseur ARN, présentent un profil d'expression différent entre les cellules NB4 et NB4- LR1 en réponse au traitement à l'ATRA. Les résultats obtenus suggèrent donc que les miRNAs miR-17, miR-18, miR19a, miR19b, miR-20 et miR-92 sont impliqués dans la différenciation des cellules NB4 et NB4-LR1, et plus précisément dans la granulopoïèse. Exemple 5: Expression des miRNA dans les cellules des lignées cellulaires NB4 et NB4-LR1 en réponse à un traitement simultané à l'ATRA et à l'AMPc Pour confirmer la corrélation entre l'expression des différents miRNAs miR-17, miR-18, miR-19a, miR19b, miR-20 et miR-92 et la différenciation en granulocytes, des cellules des lignées cellulaires NB4 et NB4-LR1 ont été cultivées en présence ou en l'absence d'ATRA/AMPc comme décrit à l'exemple 1. À la suite d'un co-traitement ATRA/AMPc, la différenciation des cellules de la lignées cellulaire NB4-LR1 en granulocyte est restaurée. Des expériences de northern ont été effectuées selon le protocole décrit à l'exemple 2. Les différentes expériences de northern ont été réalisées avec des sondes complémentaires aux miRNAs miR-17, miR-18, miR-19a, miR19b, miR-20 et miR-92. Les résultats ont montré que le profil d'expression de ces différents miRNAs est identique entre les cellules NB4 et NB4-LR1 en réponse au cotraitement ATRA/AMPc. Pour autant, le profil d'expression de ces miRNAs diffère de celui observé dans les cellules NB4 en réponse au traitement à l'ATRA seul. En réponse au co-traitement ATRA/AMPc, les miRNAs miR-17, miR-18, miR-19a, miR-19b, miR-20 et miR-92 montrent en effet un maximum d'expression au 2ème jour de traitement, puis une 2877350 26 diminution importante de leur niveau d'expression entre le 2ème et le 3ème jour de traitement, enfin leur niveau d'expression initial se rétablit entre le 3eme et le 4ème jour d'expression. L'induction et la chute consécutive du niveau d'expression des miRNAs miR17, miR-18, miR-19a, miR-19b, miR-20 et miR-92 s'opère donc de manière plus précoce en réponse au co-traitement ATRA/AMPc (par rapport au traitement à l'ATRA seul), tout comme la différenciation des cellules NB4 en granulocytes (cf. tableau I). Les résultats obtenus confortent donc la corrélation entre l'expression des miRNA miR-17, miR-18, miR-19a, miR19b, miR-20 et miR-92 et la différenciation des cellules NB4 et NB4-LR1 en granulocytes. En outre, la cinétique d'expression différente des miRNAs étudiés entre le traitement à l'ATRA et le co-traitement ATRA/AMPc peut se justifier par la cinétique de différenciation différente entre les deux traitements. Enfin, la cinétique d'expression des miRNAs miR-17, miR-18, miR-19a, miR19b, miR-20 et miR-92 montre donc successivement une induction de leur expression avec l'initiation de la différenciation, puis une inhibition de leur expression en fin de différenciation. Exemple 6: Différenciation des cellules NB4 en réponse à une surexpression des miRNA miR-17, miR-18, miR-19a, miR19b, miR-20 et miR-92 Pour confirmer l'implication des miRNA miR-17, miR-18, miR-19a, miR19b, miR-20 et miR-92 dans la granulopoïése, la séquence génomique codant pour l'ARN précurseur de séquence SEQ ID NO: 7 (la séquence complémentaire de la séquence codant pour l'ARN précurseur de séquence SEQ ID NO: 7 est représentée dans la figure 3, SEQ ID NO: 10) a été clonée en amont du site d'entrée interne ribosomique (IRES) du vecteur MIE (MSCV IRES EGFP (enhanced green fluorescent protein), SYSTEMIX) comme décrit dans CHANGCHUN et al. (Blood, vol.94(2), p:793-802, 1999). La production de surnageants contenant le rétrovirus MIE-miRNA (MIE contenant la séquence génomique SEQ ID NO: 10 sous contrôle d'un promoteur pol II) dans la lignée cellulaire Bosc 23 (PEAR et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, vol. 90, p8392-8396, 1993) a ensuite été effectuée comme décrit dans LAVAU et al. (EMBO J., vol.16, p:4226-4237, 1997). Des cellules de la lignée cellulaire NB4 ou NB4-LR1 ont ensuite été transfectées et sélectionnées selon le protocole décrit dans CHANGCHUN et al. (1999, précité). Les cellules des lignées cellulaires NB4 et NB4-LR1, transfectées stablement ou non par le vecteur MIE-miRNA, sont ensuite cultivées comme décrit à l'exemple 1 en présence ou en l'absence d'ATRA ou d'un mélange ATRA/AMPc. L'évolution de la différenciation a été déterminée journellement pour les différentes cultures comme décrit à l'exemple 1. Parallèlement, des expériences de northern ont été effectuées selon le protocole décrit à l'exemple 2. Les différentes expériences de northern ont été réalisées avec des sondes complémentaires aux miRNAs miR-17, miR18, miR-19a, miR-19b, miR-20, miR-23 et miR-92. Exemple 7: Différenciation des cellules NB4 en réponse à une inhibition de l'expression des miRNA miR-17, miR-18, miR-19a, miRl9b, miR-20 et miR- 92 Des oligonucléotides chimiquement modifiés (LNA -DNA, PROLIGO) et de séquence complémentaires aux miRNAs miR-17, miR-18, miR-19a, miR-19b, miR20, miR-91 et miR-92 ont été synthétisés. Ces oligonucléotides modifiés sont composés d'analogues de nucléotides contenant un pont 21-0, 4'-C méthylène qui permet d'améliorer aussi bien la stabilité de l'oligonucléotide obtenu que les performances d'hybridation de celui-ci. Des cellules de la lignées cellulaires NB4 ou NB4-LR1 ont ensuite été transfectées par les oligonucléotides synthétisés selon le protocole décrit dans MEISTER et al.(RNA, vol.10(3), p:544-50, 2004). Les cellules des lignées cellulaires NB4 et NB4-LR1, transfectées ou non par un oligonucléotide complémentaire aux miRNAs miR-17, miR-18, miR-19a, miR-19b, miR-20, miR-91 et miR-92, sont ensuite cultivées comme décrit à l'exemple 1 en présence ou en l'absence d'ATRA ou d'un mélange ATRA/AMPc. L'évolution de la différenciation a été déterminée journellement pour les différentes cultures comme décrit à l'exemple 1. Parallèlement, des expériences de northern ont été effectuées selon le protocole décrit à l'exemple 2. Les différentes expériences de northern ont été réalisées avec des sondes complémentaires aux miRNAs miR-17, miR18, miR-19a, miR-19b, miR-20, miR-23 et miR-92. REVENDICATIONS 1. Procédé in vitro pour identifier des agents thérapeutiques ou des combinaisons d'agents thérapeutiques efficaces pour induire la différenciation de cellules leucémiques myéloïde, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes de: i.) mise en culture de cellules issues d'une leucémie myéloïde, ii) addition d'au moins un composé au milieu de culture de ladite lignée cellulaire, iii) analyse de l'évolution du niveau d'expression d'au moins un miRNA codé par le précurseur ARN de séquence SEQ ID NO: 7 entre les étapes (i) et (ii), iv) identification des composés ou des combinaisons de composés entraînant une modification du niveau d'expression dudit miRNA entre les étapes (i) et (ii). 2. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que l'étape (iii) consiste en l'analyse du niveau d'expression d'au moins un miRNA choisi parmi miR-17 (SEQ ID NO:1), miR-18 (SEQ ID NO:2), miR-19a (SEQ ID NO:3), miR-19b (SEQ ID NO:4), miR-20 (SEQ ID NO:5), miR-91 (SEQ ID NO:8) ou miR92 (SEQ ID NO:6). 3. Procédé selon la revendication 2, caractérisé en ce que l'étape (iv) consiste en l'identification des composés ou des combinaisons de composés modulant le niveau d'expression d'au moins un miRNA choisi parmi miR-17 (SEQ ID NO:1), miR- 18 (SEQ ID NO:2), miR-19a (SEQ ID NO:3), miR-19b (SEQ ID NO:4), miR-20 (SEQ ID NO:5), miR-91 (SEQ ID NO:8) ou miR-92 (SEQ ID NO:6). 4. Procédé selon la revendication 3, caractérisé en ce que l'étape (iv) consiste en l'identification des composés ou des combinaisons de composés augmentant le niveau d'expression d'au moins un miRNA choisi parmi miR-17 (SEQ ID NO:1), miR-18 (SEQ ID NO:2), miR-19a (SEQ ID NO:3), miR- 19b (SEQ ID NO:4), miR-20 (SEQ ID NO:5), miR-91 (SEQ ID NO:8) ou miR-92 (SEQ ID NO:6), entre le jour du traitement (JO) et le quatrième jour de traitement. 5. Procédé selon la revendication 3, caractérisé en ce que l'étape (iv) consiste en l'identification des composés ou des combinaisons de composés diminuant le niveau d'expression d'au moins un miRNA choisi parmi miR-17 (SEQ ID NO:1), miR-18 (SEQ ID NO:2), miR-19a (SEQ ID NO:3), miR-19b (SEQ ID NO:4), miR-20 (SEQ ID NO:5), miR-91 (SEQ ID NO:8) ou miR-92 (SEQ ID NO:6), entre le jour suivant le début du traitement (J1) et le quatrième jour de traitement. 6. Procédé selon l'une quelconque des revendications 15 précédentes, caractérisé en ce que le composé est un agent thérapeutique pour le traitement du cancer. 7. Procédé selon la revendication 6, caractérisé en ce que l'agent thérapeutique est choisi parmi l'AMPc, l'arsenic, les interférons, le TNF, les réxinoïdes, l'acide rétinoïque et les dérivés des rétinoïdes. 8. Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce que l'étape (iii) d'analyse 25 utilise la technique de northern blot. 9. Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce que les cellules mises en culture à l'étape (i) sont issues d'une leucémie myéloïde associée à un blocage de la granulopoïèse. 10. Procédé in vitro pour identifier des miRNAs associés à la différenciation de cellules dérivées d'une leucémie myéloïde, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes de: i) mise en culture de cellules issues d'une leucémie myéloïde, ii) addition, dans le milieu de culture, d'au moins un composé induisant la différenciation desdites cellules, iii) analyse de l'évolution du niveau d'expression d'au moins un miRNA, ou d'un précurseur de miRNAs entre les étapes (i) et (ii), iv) identification des miRNAs qui présentent une variation de leur profil d'expression au cours de la différenciation. 11. Procédé selon la revendication 10, caractérisé en ce que l'étape (iv) consiste en l'identification des miRNAs qui présentent un profil d'expression similaire ou identique, au cours de la différenciation cellulaire, à celui d'au moins un miRNA codé par l'ARN précurseur de séquence SEQ ID NO:7. 12. Procédé selon la revendication 11, caractérisé en ce que l'étape (iv) consiste en l'identification des miRNAs qui présentent un profil d'expression similaire ou identique, au cours de la différenciation cellulaire, à celui d'au moins un miRNA choisi parmi miR-17 (SEQ ID NO:1), miR-18 (SEQ ID NO:2), miR-19a (SEQ ID NO:3), miR-19b (SEQ ID NO:4), miR20 (SEQ ID NO:5), miR-91 (SEQ ID NO:8) et miR-92 (SEQ ID NO:6). 13. Procédé selon l'une quelconque des revendications 10 à 12, caractérisé en ce que les cellules mises en culture à l'étape (i) sont choisies parmi les cellules de la lignée cellulaire NB4 ou de lignées cellulaires dérivées de celle-ci, de préférence des lignées cellulaires NB4-LR1 ou NB4-LR2. 14. Procédé selon la revendication 13, caractérisé en ce que le composé utilisé pour induire la différenciation des cellules de la lignée cellulaire NB4 est choisi parmi l'ATRA et un mélange ATRA/AMPc. 15. Procédé selon la revendication 13, caractérisé en ce que le composé utilisé pour induire la différenciation des 2877350 32 cellules de la lignée cellulaire NB4-LR1 est un mélange ATRA/AMPc. 16. Procédé selon l'une quelconque des revendications 14 5 ou 15, caractérisé en ce que la concentration d'ATRA utilisée est comprise entre 1 nM et 1 mM. 17. Procédé selon l'une quelconque des revendications 14 ou 15, caractérisé en ce que la concentration d'AMPc utilisée 10 est comprise entre 100 nM et 100 mM.