Brevet FR2874219A1 — publié le 20060217

La présente invention concerne des supports de culture cellulaire, un procédé pour la production de supports de culture cellulaire et un procédé pour cultiver des cellules (procédé de culture de cellules), et concerne plus spécifiquement des supports de culture cellulaire, un procédé pour la production des supports de culture cellulaire et un procédé pour cultiver des cellules au moyen des supports de culture cellulaire. Ces dernières années, la technologie de culture de cellules a été utilisée dans divers domaines industriels et domaines de recherche tels que la modification génétique de tissus, des tests d'innocuité de médicaments, la production de protéines à des fins de traitement ou de diagnostic. Récemment, afin de cultiver efficacement un grand nombre de cellules, dépendant de l'ancrage, la culture de cellules était effectuée par culture tridimensionnelle à haute densité (culture en suspension), au lieu de la culture sur plaque qui est couramment utilisée. Tandis que la culture sur plaque utilise une fiole de culture, la culture en suspension utilise un certain nombre de supports qui servent d'échafaudages sur lesquels les cellules sont cultivées. Dans une telle culture tridimensionnelle à haute densité, divers types de supports de culture cellulaire qui sont constitués, par exemple, de polystyrène, de diéthylaminoéthyl(DEAE)cellulose, de polyacrylamide, etc., sont utilisés. Cependant, en fonction du type de cellule ou de condition de culture, il existe un cas où les cellules adhèrent difficilement à ces supports, ou bien les cellules se développent difficilement sur ces supports même si elles y ont adhéré. En conséquence, des supports de culture cellulaire dont les matières de base sont revêtues d'hydroxyapatite ont été proposées récemment (voir la publication de demande de brevet des Etats-Unis d'Amérique N 2003-162287) . Puisque les cellules ont pour propriété d'adhérer au calcium, elles peuvent adhérer efficacement aux supports de culture cellulaires décrits ci-dessus. Cependant, d'autre part, dans ces supports de culture cellulaire, un problème consiste en le fait que, lors de l'utilisation de cellules qui se sont développées sur les surfaces des supports de culture cellulaire, il est difficile de séparer ou de détacher les cellules des supports. En outre, il se pose également un problème consistant en la possibilité de diminution de la vitesse de croissance des cellules. En conséquence, un objectif de la présente invention consiste à proposer des supports de culture cellulaire qui permettent aux cellules d'adhérer efficacement à ceux-ci et de se développer suffisamment sur ceux-ci, et desquels les cellules qui se développées peuvent être aisément séparées ou détachées, un procédé pour la production aisée et faible des supports de culture cellulaire et un procédé pour cultiver des cellules au moyen des supports de culture cellulaire. Afin d'atteindre l'objectif précité, la présente invention concerne des supports de culture cellulaire dans lesquels chacun des supports de culture cellulaire possède une surface à laquelle les cellules peuvent adhérer de telle sorte que les cellules adhérentes se développent sur les surfaces de ces supports, chacun des supports de culture cellulaire ayant au moins une de ses surfaces, y compris les environs immédiats de cellesci, constituée principalement d'apatite à base de phosphate de calcium dans laquelle une partie du Ca manque. Conformément à la présente invention, décrite ci-dessus, il est possible d'obtenir des supports de culture cellulaire qui permettent aux cellules d'adhérer efficacement à ceux-ci et de croître suffisamment sur ceux- ci et desquels les cellules qui se sont développées peuvent être aisément séparées ou détachées. Dans les supports de culture cellulaire conformes à la présente invention, il est préféré que le taux de déficience en Ca de l'apatite à base de phosphate de calcium dans laquelle une partie du Ca manque soit de 1 à 30 en moles. Cela permet aux cellules d'adhérer plus efficacement aux supports de culture cellulaire et de croître plus suffisamment sur ces supports. En outre, les cellules qui se sont développées peuvent être plus aisément séparées ou détachées des supports de culture cellulaire. Dans les supports de culture cellulaire conformes à la présente invention, il est également préféré que la masse volumique de chacun des supports de culture cellulaire soit de 1,01 à 1,5 g/cm3. Cela permet aux supports de culture cellulaire d'être mis en suspension dans une solution de culture plus uniformément, ce qui permet aux cellules d'adhérer plus efficacement aux supports de culture cellulaire. Dans les supports de culture cellulaire conformes à la présente invention, il est également préféré que chacun des supports de culture cellulaire ait une forme de particule. Les supports de culture cellulaire ayant chacun une telle forme permettent aux cellules d'adhérer de manière égale à chaque support et de croître plus efficacement sur les surfaces des supports de culture cellulaire. En outre, les supports de culture cellulaire ayant chacun une forme granulaire peuvent être mis en suspension plus uniformément dans une solution de culture. En conséquence, les supports de culture cellulaire ont des possibilités accrues d'entrée en contact avec les cellules, ce qui permet aux cellules d'adhérer plus efficacement à ceux- ci. Dans les supports de culture cellulaire conformes à la présente invention, il est également préféré que le diamètre moyen de particules des supports de culture cellulaire soit de 10 à 2000 pm. Au moyen des supports de culture cellulaire ayant un tel diamètre moyen de particules, il est possible que les cellules adhèrent à, et se développent sur, leurs surfaces puisque la surface de chaque support de culture cellulaire est suffisamment grande par rapport aux dimensions de chaque cellule. Dans les supports de culture cellulaire conformes à la présente invention, il est également préféré que l'apatite à base phosphate de calcium dans laquelle une partie du Ca manque soit constituée principalement d'hydroxyapatite dans laquelle une partie du Ca manque. Puisque l'hydroxyapatite est utilisée comme biomatériau, des cellules peuvent adhérer extrêmement efficacement à celles-ci et, ainsi, il existe une possibilité particulièrement réduite de détérioration des cellules. Pour cette raison, l'hydroxyapatite déficiente en Ca peut également avoir de telles propriétés et, en conséquence, elle est utilisée de manière particulièrement convenable comme apatite à base de phosphate de calcium dans laquelle une partie du Ca manque. Dans les supports de culture cellulaire conformes à la présente invention, il est également préféré que chacun des supports de culture cellulaire comprenne une matière de base ayant une surface et une couche de revêtement formée de manière à revêtir la surface de la matière de base, la couche de revêtement étant constituée principalement d'apatite à base de phosphate de calcium dans laquelle une partie du Ca manque. Par cette structure, la forme, les dimensions et les propriétés physiques (densité, etc.) des supports de culture cellulaire peuvent être ajustées de préférence en choisissant de manière appropriée la forme, les dimensions et les propriétés physiques de la matière de base. Dans les supports de culture cellulaire conformes à la présente invention, il est également préféré que la matière de base soit constituée principalement d'une résine. Par cette structure, il est possible d'ajuster plus aisément la forme, les dimensions et les propriétés physiques (densité) des supports de culture cellulaire. Dans les supports de culture cellulaire conformes à la présente invention, il est également préféré que la résine soit constituée principalement d'au moins une des résines consistant en une résine de polyamide et une résine époxy. En utilisant une telle matière de base constituée principalement d'au moins une des résines consistant en une résine de polyamide et une résine époxy, l'effet suivant peut être obtenu. A ce propos, puisque la densité de la matière précitée est proche de celle de l'eau, il est aisé d'ajuster la densité des supports de culture cellulaire à une valeur proche de celle de l'eau. En outre, ces supports de culture cellulaire ayant une densité proche de celle de l'eau peuvent être dispersés uniformément dans une solution de culture, avec une agitation douce. En outre, la matière précitée a une forte adhésivité à l'apatite déficiente en Ca, ce qui permet de revêtir de manière fiable la surface de la matière de base avec l'apatite déficiente en Ca. En outre, puisque la matière précitée a une excellente résistance à la chaleur, il est possible d'obtenir des supports de culture cellulaire ayant une grande résistance à la chaleur. Ces supports de culture cellulaire peuvent être soumis à une stabilisation d'autoclave avant culture cellulaire. Dans les supports de culture cellulaire conformes à la présente invention, il est également préféré que la matière de base contienne une matière magnétique. Au moyen de cette modification, les supports de culture cellulaire peuvent être déplacés dans une solution de culture lorsqu'un champ magnétique y est appliqué, ce qui permet d'agiter la solution de culture au moyen de ces supports. Comparativement à une agitation en utilisant un barreau d'agitation, l'agitation de la solution de culture par les supports de culture cellulaire décrits ci-dessus permet d'agiter plus uniformément et doucement (modérément) la solution de culture. En conséquence, il est possible que les cellules adhèrent aisément aux surfaces des supports de culture cellulaire, et il est également possible d'éviter que les cellules en soient séparées ou détachées en raison de la collision entre les supports de culture cellulaire. En outre, puisque la même nutrition est fournie aux cellules, les cellules se développent plus efficacement. Un autre aspect de la présente invention concerne des supports de culture cellulaire dans lesquels chacun des supports de culture cellulaire possède une surface à laquelle les cellules peuvent adhérer de telle sorte que les cellules adhérentes se développent sur les surfaces de ces supports, chacun des supports de culture cellulaire ayant au moins une de ses surfaces, y compris les régions voisines de celles-ci, constituée principalement d'apatite dans laquelle une partie de son élément bivalent manque. Suivant l'invention de cet aspect, il est possible d'obtenir des supports de culture cellulaire qui permettent aux cellules d'adhérer efficacement à ceux-ci et de croître suffisamment sur ceux-ci, et desquels les cellules qui se sont développées peuvent être aisément séparées ou détachées. Un autre aspect de la présente invention concerne un procédé pour la production des supports de culture cellulaire décrits ci-dessus. Le procédé de production comprend: une première étape pour l'obtention d'une suspension contenant de l'apatite à base de phosphate de calcium et de l'acide phosphorique; une deuxième étape pour le séchage de la suspension afin d'obtenir une poudre; et une troisième étape de frittage de la poudre pour obtenir une poudre frittée qui est formée principalement de l'apatite à base de phosphate de calcium dans laquelle une partie du Ca manque, par réaction de l'apatite à base de phosphate de calcium et de l'acide phosphorique dans la poudre tout en maintenant la structure d'apatite, ce qui permet de produire l'apatite à base de phosphate de calcium dans laquelle une partie du Ca manque. Suivant ce procédé de production, il est possible de produire de manière aisée et fiable des supports de culture cellulaire qui permettent aux cellules d'adhérer efficacement à ceux-ci et de croître suffisamment sur ceux-ci et desquels les cellules qui se sont développées peuvent être aisément séparées ou détachées. L'autre aspect de la présente invention concerne un procédé de production des supports de culture cellulaire de la manière définie dans le deuxième aspect de la présente invention. Le procédé de production comprend: une première étape pour l'obtention d'une suspension contenant de l'apatite à base de phosphate de calcium et de l'acide phosphorique; une deuxième étape pour le séchage de la suspension afin d'obtenir une poudre; une troisième étape de frittage de la poudre pour obtenir une poudre frittée qui est formée principalement de l'apatite à base de phosphate de calcium dans laquelle une partie du Ca manque, en faisant réagir l'apatite à base de phosphate de calcium et l'acide phosphorique pour la poudre, tout en maintenant la structure d'apatite pour produire ainsi l'apatite à base de phosphate de calcium dans laquelle une partie du Ca manque; et une quatrième étape de revêtement d'une matière de base avec la poudre frittée. Suivant ce procédé de production, il est possible de produire aisément et de manière fiable des supports de culture cellulaire qui permettent aux cellules d'adhérer efficacement à ceux-ci et de croître suffisamment sur ceux- ci et desquels les cellules qui se sont développées peuvent être aisément séparées ou détachées. En outre, la forme, les dimensions et les propriétés physiques (densité, etc.) de ces supports de culture cellulaire peuvent être aisément ajustées en choisissant de manière appropriée la forme, les dimensions et les propriétés physiques de la matière de base. Dans le procédé de production décrit ci-dessus, il est préféré que le rapport de mélange de l'apatite à base de phosphate de calcium et l'acide phosphorique soit de 6:1 à 1:1, en tant que rapport molaire, dans la première étape. Suivant ce procédé de production, il est possible de produire des supports de culture cellulaire qui permettent aux cellules d'adhérer plus efficacement à ceux-ci et de croître plus efficacement sur ceux-ci, et desquels les cellules qui se sont développées peuvent être plus aisément séparées ou détachées. Dans le procédé de production décrit ci-dessus, il est également préféré que la température de frittage de la troisième étape soit également inférieure à 1000 C. Par ce procédé, il est possible de produire de manière plus fiable l'apatite à base de phosphate de calcium dans laquelle une partie du Ca manque. Dans le procédé de production décrit ci-dessus, il est également préféré que le temps de frittage dans la troisième étape soit de 0,1 à 10 heures. Par ce procédé, il est également possible de produire de manière plus fiable l'apatite à base de phosphate de calcium dans laquelle une partie du Ca manque. Dans le procédé de production décrit ci-dessus, il est préféré que le frittage dans la troisième étape soit 25 effectué dans l'air atmosphérique. Par ce moyen, il est possible de produire efficacement l'apatite à base de phosphate de calcium dans laquelle une partie du Ca manque et également d'éviter une augmentation du coût de production. Un aspect supplémentaire de la présente invention concerne un procédé pour la culture des cellules, dans lequel la culture des cellules est effectuée en utilisant les supports de culture cellulaire décrits ci- dessus. Par ce procédé de culture cellulaire, il est possible pour les cellules de croître efficacement sur les surfaces des supports de culture cellulaire. Un aspect supplémentaire de la présente invention concerne un procédé pour la culture de cellules. Dans le procédé de culture de cellules, dans une solution de culture contenant les supports de culture cellulaire décrits ci-dessus et des cellules, les cellules sont mises en contact avec les supports de culture cellulaire en sorte que les cellules adhérent aux surfaces des supports de culture cellulaire et se développent sur ces surfaces. Par ce procédé de culture cellulaire, il est possible pour les cellules de croître efficacement sur les surfaces des supports de culture cellulaire. Dans ce procédé de culture cellulaire, les cellules qui se sont développées sur les supports de culture cellulaire peuvent être aisément séparées ou détachées de ceux-ci et il est ainsi possible d'utiliser les cellules à différentes fins. Ces objectifs, structures et résultats de la présente invention, parmi d'autres, apparaîtront plus nettement en prenant en considération la description détaillée suivante des formes de réalisation préférées, conjointement avec les dessins annexés. La figure 1 est une vue en coupe transversale d'une première forme de réalisation d'un support de culture cellulaire conforme à la présente invention. La figure 2 est une vue en coupe transversale d'une deuxième forme de réalisation du support de culture cellulaire conforme à la présente invention. La figure 3 un graphique représentant un diagramme de diffraction des rayons X de la poudre frittée, obtenue par 30 frittage à 700 C. La figure 4 est un graphique représentant un digramme de diffraction des rayons X de la poudre frittée, obtenue par frittage à 1100 C. La figure 5 est un graphique représentant un diagramme 35 de diffraction des rayons X de la poudre frittée, obtenue par frittage à 1200 C. La figure 6 est une vue schématique en perspective d'un appareil de culture cellulaire utilisé dans la présente invention. Les supports de culture cellulaire, un procédé pour la production de supports de culture cellulaire et un procédé pour cultiver des cellules (procédé de culture de cellules) conformément à la présente invention, sont décrits en détail ci-après sur la base des formes de réalisation préférées représentées sur les dessins annexés. Tout d'abord, la première forme de réalisation des supports de culture cellulaire de la présente invention est décrite. La figure 1 est une vue en coupe transversale d'un 15 support de culture cellulaire suivant la première forme de réalisation de la présente invention. Un support de culture cellulaire 1 représenté sur la figure 1 comprend une matière de base 2 qui est constituée principalement d'une résine et une couche de revêtement 3 qui est fournie de manière à couvrir la surface de la matière de base 2. La couche de revêtement 3 est constituée principalement d'apatite à base de phosphate de calcium dans laquelle une partie du calcium manque (désignée ci-après sous le nom "apatite déficiente en Ça"). Un tel support de culture cellulaire 1 est utilisé dans une culture cellulaire dans laquelle on laisse les cellules adhérer aux surfaces des supports de culture cellulaire 1 et se développer sur ces surfaces, notamment dans une culture tridimensionnelle à haute densité (culture en suspension). Des exemples de culture tridimensionnelle à haute densité comprennent la culture sur microsupports, la culture en fiole d'agitation centrifuge, la culture par agitation rotative par secousse, la culture rotative, etc. Parmi ces procédés, le support de culture cellulaire 1 est de préférence utilisé dans la culture sur microsupports. Suivant la culture sur microsupports, il est possible de cultiver une grande quantité de cellules avec une extrême efficacité. Le support de culture cellulaire 1 est mis sous forme granulaire (forme granulaire substantiellement sphérique), en raison de la forme granulaire de la matière de base 2 (forme substantiellement sphérique) dans la structure représentée sur la figure 1. Le support de culture cellulaire 1 ayant une telle forme permet aux cellules d'adhérer de manière égale et de croître plus efficacement sur les surfaces des supports de culture cellulaire 1. En outre, les supports de culture cellulaire 1 ayant chacun une forme granulaire peuvent être mis en suspension plus uniformément dans une solution de culture. En conséquence, les supports de culture cellulaire 1 présentent des possibilités accrues d'entrer en contact avec les cellules, ce qui permet aux cellules d'adhérer plus efficacement à ces supports. Les dimensions du support de culture cellulaire 1 ne sont pas limitées à une quelconque valeur spécifique. Cependant, lorsque la longueur maximale d'une cellule qui est amenée à adhérer au support de culture cellulaire 1 est définie par L1 (pm), et le diamètre moyen de particules des supports de culture cellulaire 1 est défini par L2 (pm), le rapport L2/L1 est compris avantageusement dans l'intervalle d'environ 2 à 100, et plus avantageusement d'environ 5 à 50. Plus précisément, L2 est avantageusement compris dans l'intervalle d'environ 10 à 2000 pm, plus avantageusement dans l'intervalle d'environ 50 à 1000 pm, et encore plus avantageusement dans l'intervalle d'environ 100 à 300 pm. En fixant le rapport L2/L1 à une valeur dans l'intervalle ci-dessus, il est possible d'augmenter suffisamment la surface de chaque support de culture cellulaire 1 par rapport aux dimensions de la cellule, ce qui permet aux cellules d'adhérer plus aisément aux, et de croître sur, les surfaces des supports de culture cellulaire 1. Si le diamètre moyen de particules des supports de culture cellulaire 1 est trop petit, il existe une tendance, non seulement du fait que les cellules ne peuvent adhérer efficacement à ces supports mais, en outre, qu'une agglutination est susceptible de se produire dans les supports de culture cellulaire 1. D'autre part, si le diamètre moyen de particules des supports de culture cellulaire 1 est trop grand, la vitesse de sédimentation des supports de culture cellulaire 1 dans la solution de culture est accrue et, ainsi, la vitesse d'agitation doit être obligatoirement plus grande au cours de la culture cellulaire. Dans un tel cas, les supports de culture cellulaire 1 sont susceptibles d'entrer en collision les uns avec les autres. En résultat, il existe une possibilité de détérioration des cellules adhérant aux surfaces des supports de culture cellulaire 1. En outre, il est préféré que la masse volumique du support de culture cellulaire 1 soit proche de celle de l'eau pour permettre aux supports de culture cellulaire 1 d'être mis en suspension dans une solution de culture plus uniformément. Plus précisément, la masse volumique du support de culture cellulaire 1 est comprise avantageusement dans l'intervalle d'environ 1,01 à environ 1,5 g/cm3, et plus avantageusement dans l'intervalle d'environ 1,02 à 1,2 g/cm3. En fixant la masse volumique du support de culture cellulaire 1 à une valeur dans l'intervalle précité, il est possible de mettre en suspension des supports de culture cellulaire 1 dans une solution de culture plus uniformément, ce qui permet aux cellules d'adhérer plus efficacement aux supports de culture cellulaire 1. La forme, les dimensions (diamètre moyen de particules, etc.) et les propriétés physiques (masse volumique, etc.) d'un tel support de culture cellulaire 1 peuvent être ajustées en choisissant de manière appropriée la forme, les dimensions, les propriétés physiques, etc., de la matière de base 2. Par exemple, la masse volumique du support de culture cellulaire 1 peut être ajustée en choisissant de manière appropriée la matière constitutive de la matière de base 2 et sa forme (par exemple structure poreuse, structure creuse, etc.). La matière de base 2 est constituée principalement d'une résine. L'utilisation d'une telle matière de base 2 permet d'ajuster plus aisément la forme, les dimensions et les propriétés (masse volumique, etc. ) du support de culture cellulaire 1. Dans le cas de la production d'un support de culture cellulaire 1 ayant le diamètre moyen de particules précité, le diamètre moyen de particules de la matière de base 2 est compris avantageusement dans l'intervalle d'environ 10 à 2000 pm, plus avantageusement dans l'intervalle d'environ 50 à 500 pm, et encore plus avantageusement dans l'intervalle d'environ 100 à 300 pm. En outre, dans le cas de la production de supports de culture cellulaire 1 ayant la masse volumique précitée, la masse volumique de la matière de base 2 est comprise avantageusement dans l'intervalle d'environ 1,01 à 1,5 g/cm3 et plus avantageusement dans l'intervalle d'environ 1,02 à 1,2 g/cm3. En ce qui concerne la résine utilisée dans la matière de base 2, il est possible d'utiliser diverses résines thermodurcissables et diverses résines thermoplastiques. Des exemples de résines thermoplastiques comprennent un polyamide, un polyéthylène, un polypropylène, un polystyrène, un polyimide, une résine acrylique et un polyuréthanne thermoplastique. En outre, des exemples de résines thermodurcissables comprennent une résine époxy, une résine phénolique, une résine de mélamine, une résine d'urée, un polyester insaturé, une résine alkyd, un polyuréthanne thermodurcissable et l'ébonite. Ces résines peuvent être utilisées seules ou en association de deux ou plus de deux. Parmi ces résines, une résine qui est constituée principalement d'au moins une des résines consistant en une résine de polyamide et une résine époxy convient particulièrement. En utilisant une telle matière de base 2, l'effet suivant peut être obtenu. Puisque la densité (masse volumique) de la matière précitée est proche de celle de l'eau, il est également aisé d'ajuster la densité (masse volumique) du support de culture cellulaire 1 à une valeur proche de celle de l'eau. Ces supports de culture cellulaire peuvent être dispersés uniformément dans une solution de culture avec une agitation douce. En outre, la matière précitée a une forte adhésivité à l'apatite déficiente en Ca, ce qui permet de revêtir de manière fiable la surface de la matière de base 2 avec l'apatite déficiente en Ca. En outre, puisque la matière précitée a une excellente résistance à la chaleur, il est possible d'obtenir des supports de culture cellulaire 1 ayant une grande résistance à la chaleur. Ces supports de culture cellulaire 1 peuvent être soumis à une stérilisation en autoclave avant culture cellulaire. En outre, la résine peut être colorée avec un pigment organique, un pigment inorganique, un colorant acide, un colorant basique, etc. La couche de revêtement 3 est fournie de manière à couvrir la surface pratiquement totale de la matière de base 2. De la manière décrite cidessus, la couche de revêtement 3 est formée principalement d'apatite déficiente en Ca (apatite à base de phosphate de calcium dans laquelle une partie du calcium manque). A cet égard, il faut noter que l'apatite à base de phosphate de calcium possède une structure cristalline hexagonale représentée par une formule de composition Calo(PO4)6X2r et l'apatite déficiente en Ca est une apatite dans laquelle la quantité de Ca est réduite par rapport à l'apatite à base de phosphate de calcium représentée par la formule de composition ci-dessus. En conséquence, l'apatite déficiente en Ca comprend une apatite dans laquelle la quantité relative de Ca est réduite en raison de l'addition de "PO4" et de "X" à l'apatite à base de phosphate de calcium représentée par la formule de composition précitée, et comprend également une apatite dans laquelle la quantité relative de Ca est réduite en raison de l'élimination du Ca de l'apatite à base de phosphate de calcium représentée par la formule de composition précitée. En outre, dans une solution de culture, des protéines qui sont impliquées dans la croissance de cellules existent et, normalement, ces protéines adhèrent (sont adsorbées) aux supports de culture cellulaire 1initialement, puis les cellules adhèrent aux supports de culture cellulaire 1 par l'intermédiaire de ces protéines. La protéine a une charge électrique négative et, ainsi, adhère au Ca ayant une charge électrique positive. En conséquence, divers types de composés à base de phosphate de calcium peuvent adsorber convenablement la protéine, ce qui permet aux cellules d'adhérer suffisamment à ceux-ci. En outre, par l'étude effectuée par l'inventeur de la présente invention, il a été trouvé que, parmi divers composés à base de phosphate de calcium, un composé ayant une structure d'apatite (à savoir une apatite à base de phosphate de calcium) présente une capacité d'adsorption particulièrement grande pour une protéine, c'est-à-dire une grande capacité d'adsorption pour des cellules en raison de sa structure cristalline unique. Dans la présente invention, une apatite déficiente en Ca comprenant une quantité réduite de Ca par rapport à l'apatite à base de phosphate de calcium (désignée ci-après sous le nom "apatite") est utilisée. L'apatite déficiente en Ca présente une grande capacité d'adsorption pour une protéine en raison de sa structure d'apatite. En conséquence, le support de culture cellulaire 1 ayant une surface, y compris ses régions voisines, constituée principalement d'une telle apatite déficiente en Ca (c'est-àdire la couche de revêtement 3 dans cette forme de réalisation), permet aux cellules d'adhérer à celui-ci extrêmement efficacement. De plus, au moyen de ces supports de culture cellulaire 1, les cellules qui ont adhéré aux surfaces de ces supports peuvent croître plus efficacement, et les cellules qui se sont développées peuvent être aisément séparées ou détachées des supports 1, comparativement à des supports de culture cellulaire comprenant chacun une couche de revêtement 3 constituée d'apatite (apatite à base de phosphate de calcium dont le Ca ne manque pas substantiellement). On suppose que ces effets résultent des facteurs suivants. A ce propos, la croissance des cellules s'est produite sur les surfaces des supports de culture cellulaire 1 en utilisant les protéines comme marqueurs. Cependant, dans le cas où une trop grande quantité de Ca existe sur les surfaces de supports de culture cellulaire (c'est-à-dire dans le cas de l'apatite), les cellules sont extrêmement susceptibles d'adhérer directement (c'est-à-dire d'adhérer non spécifiquement) au Ca, ce qui perturbe la croissance des cellules. D'autre part, l'apatite déficiente en Ca possède une quantité réduite de Ca par rapport à l'apatite, ce qui permet de réduire la probabilité que les cellules adhèrent directement au Ca. Par ce résultat, la croissance des cellules peut être accélérée. En outre, en général, la force de liaison (l'adhérence) des cellules au Ca est puissante. Cependant, dans le cas du support de culture cellulaire 1 comprenant le revêtement d'apatite déficiente en Ca, il est possible de diminuer la probabilité que les cellules adhèrent directement (adhèrent de manière non spécifique) au Ca. Pour cette raison, il est considéré que, dans le support de culture cellulaire 1 comprenant le revêtement d'apatite déficiente en Ca, il est possible de séparer ou détacher aisément des supports de culture cellulaire 1 les cellules qui se sont développées. De manière décrite ci-dessus, au moyen des supports de culture cellulaire 1 dans la présente invention, on laisse les cellules adhérer efficacement à ceux-ci et ensuite croître efficacement sur ceux-ci, les cellules qui se sont développées pouvant être aisément séparées ou détachées de ces supports. Dans l'apatite déficiente en Ca, le taux de déficience en Ca varie légèrement en fonction du type d'apatite et n'est pas limité à une quelconque valeur spécifique. Cependant, il est préféré que le taux de déficience en Ca soit d'environ 1 à 30 % en moles, plus avantageusement d'environ 5 à 25 % en moles, et encore plus avantageusement d'environ 8 à 20 % en moles. Si le taux de déficience en Ca est trop bas, il existe une possibilité que les cellules ne puissent pas se développer efficacement sur les surfaces des supports de culture cellulaire 1, ce qui signifie que la vitesse de croissance des cellules sur les surfaces des supports de culture cellulaire 1 est réduite. En outre, il existe également une autre possibilité que les cellules qui se sont développées ne puissent pas être détachées efficacement des surfaces des supports de culture cellulaire 1, c'est-à-dire que la capacité de séparation ou de détachement des cellules qui se sont développées soit réduite. D'autre part, si le taux de déficience en Ca est trop élevé, il existe une possibilité que les cellules ne puissent pas adhérer efficacement aux surfaces des supports de culture cellulaire 1, c'est-à-dire que l'adhérence des cellules aux surfaces des supports de culture cellulaire 1 soit entravée. Des exemples d'apatite déficiente en Ca comprennent divers types d'apatite tels que Calo (PO4) 6 (OH) 2, Calo (PO4) 6F2, Calo (PO4) 6C1, etc., dans lesquels une partie du Ca de ceux-ci manque. Ces types peuvent être utilisés seuls ou sous forme d'une association de deux ou plus de deux d'entre eux. Parmi ceux-ci, comme apatite déficiente en Ca, une apatite contenant de l'hydroxyapatite dans laquelle une partie du Ca manque (Ca10-x-3y (PO4) 62y (OH) 2-2x, où x En outre, comme apatite déficiente en Ca, une apatite halogénée telle qu'une apatite fluorée (Ca10 (PO4) 6F2) ou une apatite chlorée (Ca10(PO4) 6C12) dans laquelle une partie du 20 Ca manque peut être utilisée. A cet égard, l'apatite déficiente en Ca peut contenir une substance résultant de la synthèse (une matière première ou similaire) et/ou un produit de réaction secondaire formé au cours de la synthèse. En outre, la couche de revêtement 3 peut être formée en fixant l'apatite déficiente en Ca à la surface de la matière de base 2. Cependant, il est préféré que, de la manière représentée sur la figure 1, la couche de revêtement 3 soit formée de fines particules 31 contenant l'apatite déficiente en Ca comme constituant principal (particules appelées ciaprès "particules 31") qui sont partiellement incluses dans la surface de la matière de base 2, y compris dans les régions voisines de celle-ci. Cela permet d'éviter que la couche de revêtement 3 soit arrachée ou détachée de la surface de la matière de base 2. A ce propos, il est possible de produire des supports de culture cellulaire 1 ayant une résistance mécanique suffisante. Une telle couche de revêtement 3 peut être dense ou poreuse. En outre, l'épaisseur moyenne des couches de revêtement 3 n'est pas limitée à une quelconque valeur spécifique, mais est avantageusement d'environ 0,1 à 5}gym, et plus avantageusement d'environ 0,5 à 2 m. Si l'épaisseur moyenne de la couche de revêtement 3 est inférieure à la valeur limite inférieure précitée, il existe un cas où une partie de la surface de la matière de base 2 est exposée dans le support de culture cellulaire 1. D'autre part, si l'épaisseur moyenne de la couche de revêtement 3 est supérieure à la valeur limite supérieure précitée, il existe un cas où il devient difficile d'ajuster la masse volumique du support de culture cellulaire 1. Pour permettre à un plus grand nombre de cellules d'adhérer aux, et de croître sur, les surfaces des supports de culture cellulaire 1 décrits cidessus, il est préféré que pratiquement la surface totale de chaque matière de base 2 soit couverte de la couche de revêtement 3, d'une manière similaire à la présente forme de réalisation. Cependant, le support de culture cellulaire 1 peut avoir une structure dans laquelle une partie de la surface de la matière de base 2 est couverte de la couche de revêtement 3, en fonction du type de cellule à cultiver avec les supports de culture cellulaire 1, du type de matière constitutive de la matière de base 2 ou de facteurs similaires (c'est-à-dire une structure dans laquelle une partie de la surface de la particule magnétique 2 est exposée par des brèches de la couche de revendication 3). Un procédé de culture cellulaire au moyen des supports de culture cellulaire 1 décrits ci-dessus conformes à la présente invention est décrit ci-après. Tout d'abord, les supports de culture cellulaire 1 sont soumis à un traitement de stérilisation. Cela permet de réduire le nombre de microorganismes ou de moisissures présents sur les surfaces de supports de culture cellulaire 1, ou de tuer totalement les microorganismes ou les moisissures. En conséquence, la possibilité que les microorganismes ou les moisissures puissent dégrader les cellules est réduite ou supprimée, ce qui permet aux cellules de croître plus efficacement. Des exemples de traitement de stérilisation comprennent un procédé dans lequel les supports de culture cellulaire 1 sont mis en contact avec une solution de stérilisation, un procédé de stérilisation en autoclave et un procédé de stérilisation par un gaz, un procédé de stérilisation par un rayonnement, etc. Parmi ces procédés, la stérilisation en autoclave convient particulièrement. Par ce procédé, il est possible de stériliser plus efficacement un grand nombre des supports de culture cellulaire 1. Puis une solution de culture contenant les supports de culture cellulaire 1, après achèvement de la mise en oeuvre du procédé 1 cidessus, et des cellules (qu'on laisse adhérer aux supports de culture cellulaire 1) est préparée. Des exemples de cellules comprennent une cellule animale, une cellule végétale, une bactérie, un virus, etc. La solution de culture est choisie de manière appropriée en fonction du type de la cellule utilisée et n'est pas limitée à une quelconque solution de culture spécifique. Des exemples de solutions de culture utilisables comprennent le milieu MEM de Dulbecco, le milieu BME, le milieu MCDB-104 et des milieux similaires. En outre, ces solutions de culture peuvent contenir, par exemple, du sérum, une protéine sérique telle que l'albumine, et des additifs tels que diverses vitamines, un aminoacide et des sels, si nécessaire. Puis la solution de culture préparée est agitée. En agitant la solution de culture, les cellules viennent en contact avec les supports de culture cellulaire 1 et adhèrent aux surfaces de ceux-ci. Dans ces conditions, les cellules se développent sur la surface des supports de culture cellulaire 1 au cours du temps, ce qui signifie qu'une culture cellulaire est effectuée. En cultivant les cellules avec agitation de la solution de culture, il est possible d'accélérer efficacement la croissance des cellules. La vitesse d'agitation de la solution de culture n'est pas limitée à une quelconque valeur spécifique mais est avantageusement de 5 à 100 tr/min et plus avantageusement d'environ 10 à 50 tr/min. Si la vitesse d'agitation est trop faible, il existe une possibilité que les supports de culture cellulaire 1 ne puissent pas être dispersés dans la solution de culture uniformément en fonction de la masse volumique et du diamètre moyen de particules des supports de culture cellulaire 1. Dans un tel cas, il est difficile pour les cellules de croître efficacement sur les surfaces des supports de culture cellulaire 1. D'autre part, si la vitesse d'agitation est trop grande, les supports de culture cellulaire 1 sont agités excessivement, ce qui engendre une situation dans laquelle les supports de culture cellulaire 1 entrent en collision les uns avec les autres, ce qui détériore les cellules qui y adhèrent. En outre, la température de la solution de culture (la température de culture) est déterminée de manière appropriée en fonction du type de cellule à cultiver et n'est pas limitée à une quelconque valeur spécifique. Habituellement, la température est d'environ 4 à 40 C, et de préférence d'environ 25 à 37 C. Puis, les cellules qui ont adhéré aux, et se sont développées sur, les surfaces des supports de culture cellulaire 1, sont séparées ou détachées des supports de culture cellulaire 1 et ensuite recueillies. Tout d'abord, les supports de culture cellulaire 1 sont mis en contact avec une solution pour le détachement des cellules, ce qui fait que les cellules sont séparées ou détachées des surfaces des supports de culture cellulaire 1 et sont ensuite libérées dans la solution de détachement de cellules. Des exemples de solutions de détachement de cellules comprennent une solution de trypsine, une solution de EDTA, une solution hypotonique et des solutions similaires. La température de la solution de détachement de cellules n'est pas limitée à une quelconque valeur spécifique mais est avantageusement d'environ 4 à 40 C, et plus avantageusement d'environ 25 à 37 C. Le temps durant lequel les supports de culture cellulaire 1 sont maintenus en contact avec la solution de détachement de cellules n'est pas limité non plus à une quelconque valeur spécifique mais est compris avantageusement entre 1 à 30 minutes, et plus avantageusement entre environ 5 et 15 minutes. En outre, tandis que les supports de culture cellulaire 1 sont maintenus en contact avec la solution de détachement de cellules, la solution de détachement de cellules peut être agitée, soumise à des vibrations, agitée par secousses ou agitée d'une autre manière. Par ce moyen, il devient possible d'améliorer la vitesse de collecte des cellules dans la solution de détachement de cellules. Lors de l'agitation de solution de détachement de cellules, la vitesse d'agitation n'est pas limitée à une quelconque valeur spécifique mais est avantageusement d'environ 5 à 100 tr/min, et plus avantageusement d'environ 10 à 50 tr/min. Puis, la solution de détachement de cellules contenant les cellules est passée à travers un filtre ou une colonne ou un dispositif similaire pour recueillir les cellules. Les cellules recueillies sont utilisées dans diverses expériences, des recherches, la production de protéines, etc. Par exemple, des supports de culture cellulaire 1 5 peuvent être produits par les procédés suivants. Ci-après, un procédé pour la production du support de culture cellulaire 1 représenté sur la figure 1 (un exemple d'un procédé pour la production du support de culture cellulaire conformément à la présente invention) est décrit. Le procédé pour la production du support de culture cellulaire 1 représenté sur la figure 1 comprend les étapes suivantes: obtention d'une suspension contenant de l'apatite et de l'acide phosphorique; séchage de la suspension pour obtenir une poudre; frittage de la poudre séchée pour obtenir une poudre frittée; et revêtement de la surface d'une matière de base avec la poudre frittée. Chacune des étapes est décrite ci-après en détail dans cet ordre. [A] Etape d'obtention d'une suspension (Première étape) Tout d'abord, une suspension contenant de l'apatite et de l'acide phosphorique est préparée. Cette préparation est effectuée, par exemple, par un procédé dans lequel de l'acide phosphorique est ajouté à un liquide de dispersion d'apatite (une suspension), un procédé dans lequel de l'apatite est ajoutée à une solution d'acide phosphorique, un procédé dans lequel un liquide de dispersion d'apatite et une solution d'acide phosphorique sont mélangés, un procédé dans lequel de l'apatite et de l'acide phosphorique sont mélangés, puis un liquide (milieu de dispersion) y est ajouté. En outre, de l'apatite peut être synthétisée par un procédé bien connu tel qu'un procédé de synthèse par voie 35 humide, un procédé de synthèse par voie sèche ou un procédé similaire. Le rapport de mélange entre l'apatite et l'acide phosphorique n'est pas limité à une quelconque valeur spécifique mais est avantageusement d'environ 6:1 à 1:1, en rapport molaire, plus avantageusement d'environ 6:3 à 6:5. Si la quantité (quantité ajoutée) d'acide phosphorique est trop faible, le taux de déficience en Ca dans la poudre frittée à obtenir dans l'étape [C] suivante, qui est décrite plus loin, peut être réduit, ce qui engendre un cas où les cellules ne peuvent croître suffisamment sur les supports de culture cellulaire 1 produits, et les cellules ne peuvent être détachées des supports de culture cellulaire 1 qui ont été produits. D'autre part, si la quantité d'acide phosphorique est trop grande, le taux de déficience en Ca dans la poudre frittée à obtenir peut devenir excessivement élevé, ce qui engendre un cas où les cellules ne peuvent adhérer suffisamment aux supports de culture cellulaire 1 produits. [B] Etape d'obtention d'une poudre (Deuxième étape) Puis, la suspension qui a été obtenue à l'étape [A] 20 ci-dessus est séchée pour obtenir une poudre. Des exemples de procédés pour sécher la suspension comprennent le séchage par air chaud, la lyophilisation, le séchage sous vide, le séchage par atomisation, etc. Lors du chauffage de la suspension pour son séchage, la température de chauffage est avantageusement d'environ 40 à 300 C, et plus avantageusement d'environ 80 à 250 C. En outre, par exemple, dans le procédé tel que le séchage par atomisation dans lequel la suspension séchée se transforme en une poudre (granules), la suspension séchée sous forme de poudre peut être envoyée directement à l'étape [C] suivante. D'autre part, dans le procédé dans lequel la suspension séchée se transforme en un bloc, un tel bloc est broyé avant l'étape [C] suivante. Le diamètre moyen de particules de la poudre n'est pas limité à une quelconque valeur spécifique mais est de préférence égal ou inférieur à 30 pm. En particulier, le diamètre moyen de particules de la poudre est de préférence d'environ 1 à 50 % du diamètre de la matière de base 2, et plus avantageusement d'environ 10 à 25 %. Par ce moyen, il est possible de former plus aisément la couche de revêtement 3 ayant une épaisseur désirée. [C] Etape de frittage de poudre séchée (Troisième étape) Puis, la poudre qui a été obtenue dans l'étape [B] ci-dessus est frittée pour obtenir une poudre frittée. Dans la présente invention, le frittage de la poudre séchée est effectué à une température permettant de maintenir sa structure d'apatite. De cette manière, une apatite déficiente en Ca est produite par réaction entre l'apatite et l'acide phosphorique dans la poudre, ce qui fait que la poudre frittée qui est constituée principalement d'apatite déficiente en Ca peut être obtenue. A cet égard, il faut noter que, si la poudre est frittée à une température supérieure à la température à laquelle la structure d'apatite peut être maintenue, une réaction chimique indiquée par la formule chimique suivante se produit. 3Calo (PO4) 6 (OH) 2 + 2H3 (PO4) -> lOCa3 (PO4) 2 + 6H20. . . (I) A ce propos, l'apatite (Calo(PO4)6(OH)2) est transformée en phosphate tricalcique (Ca3(PO4)2: TCP). En résultat, dans la poudre frittée obtenue, la quantité d'apatite déficiente en Ca est réduite et, ainsi, les cellules ne peuvent adhérer efficacement aux, et croire sur, les surfaces des supports de culture cellulaire 1 obtenus finalement. En outre, bien que la formule chimique (I) ci-dessus ait été indiquée en rapport avec le cas où de l'hydroxyapatite est utilisée, le même résultat peut être obtenu dans le cas où un autre type d'apatite est utilisé. La température de frittage varie légèrement en fonction du type d'apatite et n'est pas limitée à une quelconque valeur spécifique, mais est avantageusement égale ou inférieure à 1000 C, et plus avantageusement comprise entre environ 400 et 750 C. Le frittage de la poudre dans la plage de températures précitée permet de produire de manière plus fiable l'apatite déficiente en Ca. En outre, le temps de frittage est avantageusement d'environ 0,1 à 10 heures, et plus avantageusement d'environ 2 à 4 heures. Si le temps de frittage est trop bref, il existe une possibilité qu'il devienne difficile de produire une quantité suffisante d'apatite déficiente en Ca. D'autre part, même si on fait en sorte que le temps de frittage soit plus long que la limite supérieure indiquée ci-dessus, une progression supplémentaire de la réaction chimique ne peut être escomptée, et ainsi cela n'est pas souhaitable car cela augmenterait simplement le temps total de production. En outre, l'atmosphère de frittage n'est pas limitée à une quelconque atmosphère de frittage spécifique. Par exemple, une atmosphère contenant de l'oxygène telle que l'air atmosphérique ou une atmosphère d'oxygène pur, une atmosphère contenant de l'argon, une atmosphère contenant de l'azote et similaires, peuvent être utilisées, mais l'air atmosphérique est particulièrement préférable. Cela permet de produire efficacement l'apatite déficiente en Ca et également de réduire les coûts de production. [D] Etape de revêtement de la matière de base (Quatrième étape) Puis, la surface de la matière de base 2 est revêtue de la poudre frittée qui a été obtenue dans l'étape [C] ci-30 dessus pour former la couche de revêtement 3. Lors de la production du support de culture cellulaire 1 de la manière représentée sur la figure 1, c'est-à-dire lors de la formation de la couche de revêtement 3 de telle sorte que les particules 31 soient partiellement incluses dans une surface de la matière de base 2, la couche de revêtement 3 peut être formée par collision de la poudre frittée avec la surface de la matière de base 2. Par ce procédé, il est possible de former de manière aisée et fiable la couche de revêtement 3 ayant une épaisseur uniforme. La collision entre la matière de base 2 et la poudre frittée peut être effectuée à l'état sec en utilisant une machine disponible dans le commerce appelée "MECHANOFUSION" (marque commerciale de Hosokawa Micron Co., Ltd.), par exemple. Dans un tel cas, la collision est réalisée dans des conditions de rapport de mélange entre la matière de base 2 et la poudre frittée compris entre environ 400:1 et 10:1 en rapport pondéral, et de température à l'intérieur de la machine égale ou inférieure à la température de ramollissement de la résine qui est utilisée comme matière principale de la matière de base 2 (habituellement égale ou inférieure à 80 [C]), par exemple. A cet égard, il faut noter qu'un procédé pour la formation de la couche de revêtement 3 n'est pas limité au procédé mentionné ci-dessus. Les supports de culture cellulaire sont obtenus par les étapes décrites ci-dessus. A cet égard, il faut également noter que la poudre frittée précitée peut être utilisée telle quelle comme supports de culture cellulaire 1. Dans un tel cas, l'étape [D] est omise. Puis, les supports de culture cellulaire suivant la deuxième forme de réalisation de la présente invention sont décrits. Une description est présentée ci-après en se focalisant sur la différence entre les supports de culture cellulaire suivant la première forme de réalisation et ceux suivant la deuxième forme de réalisation et, en conséquence, une description des points concordants sera omise. La figure 2 est une vue en coupe transversale d'un support de culture cellulaire suivant la deuxième forme de réalisation de la présente invention. Le support de culture cellulaire 1 représenté sur la figure 2 et le support de culture cellulaire 1, suivant la première forme de réalisation ont la même structure, à l'exception de la matière de base 2. La matière de base 2 représentée sur la figure 2 contient des matières magnétiques 22 dans la résine 21 qui est un constituant principal de cette matière de base; ainsi, le support de culture cellulaire 1 a une propriété magnétique dans sa totalité. En raison de la structure précitée, les supports de culture cellulaire 1 peuvent être déplacés dans une solution de culture lorsqu'un champ magnétique y est appliqué, ce qui fait qu'il est possible d'agiter la solution de culture par le mouvement des supports de culture cellulaire 1. En conséquence, il est possible d'éviter de transmettre un choc mécanique aux supports de culture cellulaire 1, qui serait engendré dans le procédé de culture classique en utilisant une fiole d'agitation centrifuge en raison de la collision entre une ailette (ou un barreau d'agitation) et des supports de culture cellulaire. Cela permet d'éviter aux cellules adhérant aux supports de culture cellulaire d'être séparées ou détachées des surfaces de ces supports, et cela évite également aux cellules d'être endommagées. En outre, comparativement à une agitation au moyen d'un barreau d'agitation, l'agitation de la solution de culture par les supports de culture cellulaire 1 décrite ci-dessus permet d'agiter la solution de culture plus uniformément et doucement (modérément). En conséquence, les cellules adhèrent aisément aux surfaces des supports de culture cellulaire 1, et une nutrition uniforme est fournie aux cellules adhérant sur la surface des supports. En conséquence, ces supports de culture cellulaires 1 servent d'échafaudage efficace pour permettre la croissance des cellules. La matière de base 2 totale peut être formée d'une matière magnétique, mais il est préféré que la matière de base 2 soit formée d'une particule composite qui est obtenue en mêlant une résine 21 et une matière magnétique 22, comme présente forme de réalisation. Suivant cette structure, il est possible d'ajuster la densité (masse volumique) de la matière de base 2 (c'est-à-dire de chaque support de culture cellulaire 1) aisément en choisissant un rapport d'incorporation (rapport de mélange) de la résine 21 et de la matière magnétique 22 de manière appropriée. En outre, il existe un autre avantage consistant en le fait que la forme et les dimensions (le diamètre moyen de particule, etc.) des supports de culture cellulaire 1 peuvent être aisément ajustés. En ce qui concerne la structure de la particule composite (particule magnétique), il est préféré que, de la manière représentée sur la figure 2, une matière magnétique (poudre magnétique) 22 soit dispersée dans une résine 21. Une telle matière de base 2 pourrait être produite relativement aisément en moulant ou en granulant une résine 21 à l'état fondu, à laquelle a été mélangée la matière magnétique 22. A cet égard, il faut noter que, dans cette particule composite, la matière magnétique 22 peut être dispersée seulement dans une partie de la résine 21 qui est située à proximité de sa surface. Des exemples de matière magnétique 22 comprennent un alliage ferromagnétique contenant de l'oxyde de fer, Fe, Ni, Co, etc. comme constituant principal de cette matière magnétique, un ferrite, un ferrite de baryum, un ferrite de strontium, etc. Ces matières magnétiques peuvent être utilisées seules ou sous forme d'une association de deux ou plus de deux. Au moyen des supports de culture cellulaire de la deuxième forme de réalisation décrite ci-dessus, il est possible d'obtenir un fonctionnement et un effet identiques à ceux du support de culture cellulaire suivant la première forme de réalisation. En outre, ce support de culture cellulaire 1 de la deuxième forme de réalisation peut être produit de la même manière que dans la première forme de réalisation. En outre, dans chaque forme de réalisation décrite ci-dessus, la surface, y compris ces régions voisines, du support de culture cellulaire 1 (c'està-dire la couche de revêtement 3) est constituée principalement de l'apatite à base de phosphate de calcium dans laquelle une partie du Ca manque. Cependant, la surface, y compris ses positions voisines, du support de culture cellulaire 1 de la présente invention peut être constituée principalement d'apatite dans laquelle une partie de son élément bivalent manque. Des exemples d'une telle apatite comprennent Mgio (PO4) 6 (OH) 2, Cdlo (PO4) 6 (OH) 2, Srlo (PO4) 6 (OH) 2, Pblo (PO4) 6 (OH) 2, Baio(PO4)6(OH)2, Mgio(SO4)6(OH)2, etc. Bien que les supports de culture cellulaire et le procédé pour la production des supports de culture cellulaire conformément à la présente invention aient été décrits ci-dessus, la présente invention n'est pas limitée à ceux-ci. Par exemple, la forme de chaque support de culture cellulaire n'est pas limitée à une forme de particules, et ce support peut être mis sous différentes formes telles qu'une forme de bloc, une forme de pastille, une forme de feuille et des formes similaires. En outre, la totalité du support de culture cellulaire 30 peut être formée d'un composé à base de phosphate de calcium. De plus, le procédé pour la production des supports de culture cellulaire de la présente invention peut comprendre en outre une ou plusieurs étapes supplémentaires à différents buts, en plus des étapes décrites ci-dessus, si nécessaire. EXEMPLES Des exemples réels de la présente invention sont maintenant décrits. 1. Etude de la température de frittage de la poudre 5 1-1. Production d'une poudre frittée (Exemple expérimental 1) Tout d'abord, de l'hydroxyapatite a été synthétisée par un procédé de synthèse par voie humide. Puis, une dispersion aqueuse à 10 % en poids 10 d'hydroxyapatite a été préparée. Puis, 15 g de solution à 10 % en poids d'acide phosphorique ont été ajoutés à un 1 litre de la dispersion aqueuse d'hydroxyapatite pour obtenir une suspension. La suspension a été ensuite séchée à une température de 200 C pendant 2 heures et a été ensuite broyée dans un mortier pour obtenir une poudre ayant un diamètre moyen de particule de 20 m. Puis, la poudre obtenue a été frittée à une température de 700 C pendant 2 heures pour obtenir une 20 poudre frittée. (Exemple expérimental 2) Des supports de culture cellulaire ont été obtenus de la même manière que dans l'exemple expérimental 1, sauf que la température de frittage de la poudre a été portée à 1100 C dans l'étape ci-dessus. (Exemple expérimental 3) Des,supports de culture cellulaire ont été obtenus de la même manière que dans l'exemple expérimental 1, sauf que la température de frittage de la poudre a été portée à 1200 C dans l'étape ci-dessus. (Exemple expérimental 4) Des supports de culture cellulaire ont été obtenus de la même manière que dans l'exemple expérimental 1, sauf que la quantité de solution d'acide phosphorique ajoutée à la dispersion aqueuse d'hydroxyapatite a été portée à 45g dans l'étape ci-dessus. (Exemple expérimental 5) Des supports de culture cellulaire ont été obtenus de la même manière que dans l'exemple expérimental 4, sauf que la température de frittage de la poudre a été portée à 5 1100 C dans l'étape ci-dessus. (Exemple expérimental 6) Des supports de culture cellulaire ont été obtenus de la même manière que dans l'exemple expérimental 4, sauf que la température de frittage de la poudre à été portée à 1200 C dans l'étape ci-dessus. 1-2. Analyse de la structure cristalline de la poudre frittée Une analyse de la structure cristalline de la poudre frittée a été effectuée par une méthode de diffraction des rayons X pour chaque poudre frittée obtenue dans les exemples expérimentaux respectifs. Les résultats de cette analyse sont représentés sur les figures 3 à 5. Comme le montre la figure 3, lorsque la température de frittage a été fixée à 700 C (exemples expérimentaux 1 et 4), un grand pic provenant de l'apatite a été observé, tandis qu'un pic provenant du TCP (phosphate tricalcique) n'a pas été reconnu. D'autre part, lorsque la température de frittage a été fixée à 1100 C (exemples expérimentaux 2 et 5), de la manière représentée sur la figure 4, un pic provenant du (3-TCP a été observé. En outre, lorsque la température de frittage a été fixée à 1200 C (exemples expérimentaux 3 et 6), un pic provenant de l'a-TCP a été observé. En particulier, dans la poudre frittée de chacun des exemples expérimentaux 5 et 6 dans lesquels la quantité ajoutée d'acide phosphorique a été augmentée par rapport à l'hydroxyapatite, les pics les plus grands provenant du (3-TCP et de l'a-TCP ont été observés respectivement, tandis qu'un pic provenant de l'apatite a été à peine reconnu. Par les résultats de ces analyses, il a été confirmé qu'une température de frittage appropriée est requise pour obtenir l'hydroxyapatite déficiente en Ca. 2. Evaluation du support de culture cellulaire 2-1. Production du support de culture cellulaire (Exemple 1) Tout d'abord, une poudre frittée a été obtenue de la même manière que dans l'exemple expérimental 1. En outre, le taux de déficience en Ca a été mesuré par la méthode de diffraction des rayons X et il a été égal à 3 % en moles. (On notera que, dans les exemples suivants, la même méthode a été utilisée.) En particulier, la mesure du taux de déficience en Ca a été effectuée de la manière suivante. Tout d'abord, l'intensité du pic principal concernant chacune des substances consistant en une substance simple formée d'hydroxyapatite et d'une substance simple formée de phosphate tricalcique ((3-TCP) toutes deux frittées à une température de 1100 C a été mesurée respectivement par mesure de diffraction des rayons X pour obtenir une valeur de référence. En résultat, le nombre de coups de la substance simple constituée d'hydroxyapatite est égal à 5000 et le nombre de coups de la substance simple constituée du (3-TCP unique est égale à 3500. Puis l'hydroxyapatite déficiente en Ca (poudre frittée) qui avait été obtenue dans l'exemple expérimental 1 a été frittée à une température de 1100 C et ensuite soumise à la mesure de diffraction des rayons X. En résultat, un motif de diffraction des rayons X incluant à la fois l'hydroxyapatite et le (3-TCP a été obtenu. Le nombre de coups de l'hydroxyapatite au niveau du pic principal est égal à 3500 et celui du P-TCP est égal à 35 1050. A cet égard, il faut noter que le frittage à la température de 1100 C a été effectué afin d'améliorer la cristallinité de chaque poudre frittée et de provoquer une transition de phase de l'hydroxyapatite déficiente en Ca au (3-TCP. Puis le taux de déficience en Ca a été calculé sur la base de la valeur de référence obtenue ci-dessus et d'après le nombre de coups obtenu lorsque l'hydroxyapatite déficiente en Ca a été soumise à la mesure ci- dessus de la manière précitée. La formule structurale (formule de composition) de l'apatite déficiente en Ca est la somme de 3500/5000 (Calo (PO4) 6(OH)2)=0a7(PO4)4,2 (OH) 1,4 et 1050/3500 (Ca9 (PO4) 6) = Ca2,7(PO4) 1,8, à savoir Ca9, (PO4) 6 (OH) 1, 4. Habituellement, l'hydroxyapatite contient 10 moles de calcium. Cependant, l'hydroxyapatite déficiente en Ca (poudre frittée) contient seulement 9,7 moles de calcium, ce qui indique que le taux de déficience en Ca est égal à 3 % en moles. A cet égard, il faut noter que, bien que le (3-TCP soit représenté normalement par la formule de composition Ca3 (PO4) 2, il est représenté par la formule Ca9 (PO4) 6 dans la formule ci-dessus pour des raisons de commodité de calcul. En outre, des particules de Nylon (matières de base) ayant un diamètre moyen de particule de 150 gm et une masse volumique de 1,02 g/cm3 ont été préparées. Puis, 3 g de la poudre frittée et 300 g des particules de Nylon ont été introduits dans un appareil "MECHANOFUSION SYSTEM AMS-LAB" (produit par Hosokawa Micron Co., Ltd.), et le système a été soumis à un fonctionnement à 2650 tr/min à 45 C pendant 70 minutes. De cette manière, des supports de culture cellulaire 1 représentés sur la figure 1 ont été obtenus. Les supports de culture cellulaire 1 ainsi obtenus 35 avaient un diamètre moyen de particules de 151 m (l'épaisseur moyenne de la couche de revêtement est égale à 1 m) et une masse volumique de 1,03 g/cm3. (Exemple 2) Une poudre frittée a été obtenue de la même manière que dans l'exemple expérimental 1, sauf que la quantité de solution d'acide phosphorique à ajouter à la dispersion aqueuse a été portée à 30 g. Dans cet exemple, le taux de déficience en Ca a été égal à 5 % en moles. Puis, des supports de culture cellulaire ont été obtenus au moyen de cette poudre frittée de la même manière que dans l'exemple 1. (Exemple 3) Tout d'abord, une poudre frittée a été obtenue de la même manière que dans l'exemple expérimental 4. Dans cet exemple, le taux de déficience en Ca a été égal à 11 % en moles. Puis des supports de culture cellulaire ont été obtenus avec cette poudre frittée de la même manière que dans l'exemple 1. (Exemple 4) Une poudre frittée a été obtenue de la même manière que dans l'exemple expérimental 1, sauf que la quantité de solution d'acide phosphorique à ajouter à la dispersion aqueuse a été portée à 50 g. Dans cet exemple, le taux de déficience en Ca était égal à 15 % en moles. Puis des supports de culture cellulaire ont été obtenus au moyen de cette poudre frittée de la même manière que dans l'exemple 1. (Exemple 5) Une poudre frittée a été obtenue de la même manière que dans l'exemple expérimental 1, sauf que la quantité de solution d'acide phosphorique à ajouter à la dispersion aqueuse a été portée à 55 g. Dans cet exemple, le taux de déficience en Ca était égal à 19 % en moles. Puis des supports de culture cellulaire ont été obtenus en utilisant cette poudre frittée de la même manière que dans l'exemple 1. (Exemple 6) Une poudre frittée a été obtenue de la même manière que dans l'exemple expérimental 1, sauf que la quantité de solution d'acide phosphorique à ajouter à la dispersion aqueuse a été portée à 60 g. Dans cet exemple, le taux de déficience en Ca était égal à 23 % en moles. Puis des supports de culture cellulaire ont été obtenus en utilisant cette poudre frittée de la même manière que dans l'exemple 1. (Exemple 7) Une poudre frittée a été obtenue de la même manière que dans l'exemple expérimental 1, sauf que la quantité de solution d'acide phosphorique à ajouter à la dispersion aqueuse a été portée à 65 g. Dans cet exemple, le taux de déficience en Ca était égal à 29 % en moles. Puis des supports de culture cellulaire ont été obtenus en utilisant cette poudre frittée de la même manière que dans l'exemple 1. (Exemple 8) Une poudre frittée a été obtenue de la même manière que dans l'exemple expérimental 4, sauf qu'une apatite fluorée a été utilisée au lieu d'hydroxyapatite. Dans cet exemple, le taux de déficience en Ca était égal à 12 % en moles. Puis des supports de culture cellulaire ont été obtenus en utilisant cette poudre frittée de la même manière que dans l'exemple 1. (Exemple 9) Une poudre frittée a été obtenue de la même manière que dans l'exemple expérimental 4, sauf qu'une apatite chlorée a été utilisée au lieu d'hydroxyapatite. Dans cet exemple, le taux de déficience en Ca était égal à 10 % en moles. Puis des supports de culture cellulaire ont été obtenus en utilisant cette poudre frittée de la même manière que dans l'exemple 1. (Exemple 10) Les supports de culture cellulaire représentés sur la figure 2 ont été obtenus de la même manière que dans l'exemple 1, sauf que des particules composites d'un Nylon 5 et d'un ferrite ont été utilisées comme matière de base au lieu de particules de Nylon. Les supports de culture cellulaire ainsi obtenus avaient un diamètre moyen de particule de 151 m (l'épaisseur moyenne de la couche de revêtement est égale à 10 1,0 ) et une masse volumique de 1,23 g/cm3. (Exemple comparatif 1) Tout d'abord, une poudre frittée a été obtenue de la même manière que dans l'exemple expérimental 1, sauf que la quantité de solution d'acide phosphorique à ajouter à la dispersion aqueuse a été amenée à 0 g. Dans cet exemple, le taux de déficience en Ca est égal à 0 % en moles. Puis des supports de culture cellulaire ont été obtenus en utilisant cette poudre frittée de la même manière que dans l'exemple 1. (Exemple comparatif 2) Tout d'abord, une poudre frittée a été obtenue de la même manière que dans l'exemple expérimental 1, sauf que l'apatite fluorée a été utilisée au lieu d'hydroxyapatite, et la quantité de solution d'acide phosphorique à ajouter à la dispersion aqueuse a été amenée à 0 g. Dans cet exemple, le taux de déficience en Ca est égal à 0 % en moles. Puis des supports de culture cellulaire ont été obtenus en utilisant cette poudre frittée de la même manière que dans l'exemple 1. (Exemple comparatif 3) Tout d'abord, une poudre frittée a été obtenue de la même manière que dans l'exemple expérimental 1, sauf que l'apatite chlorée a été utilisée au lieu d'hydroxyapatite, et la quantité de solution d'acide phosphorique à ajouter à la dispersion aqueuse a été amenée à 0 g. Dans cet exemple, le taux de déficience en Ca est égal à 0 % en moles. Puis des supports de culture cellulaire ont été obtenus en utilisant cette poudre frittée de la même manière que dans l'exemple 1. 2-2. Culture cellulaire Une culture cellulaire a été effectuée en utilisant les supports de culture cellulaire obtenus dans chacun des exemples 1 à 9 et exemples comparatifs 1 à 3 de la manière suivante. Tout d'abord, chacun des supports de culture 10 cellulaire obtenus dans chacun des exemples et chacun des exemples comparatifs a été soumis à une stérilisation en autoclave. Puis 1 g des supports de culture cellulaire et une suspension contenant 2 x 105 cellules Vero provenant de tissu rénal de singe vert africain par millilitre (/ml) ont été ajoutés à 100 ml de milieu MEM (solution de culture). Cette solution de culture a été introduite dans une fiole d'agitation centrifuge, et les cellules ont été cultivées dans des conditions consistant en une vitesse de rotation de 30 tr/min, une température de la solution de culture de 37 C et une période de temps de culture de 3 jours. Une culture cellulaire a été effectuée en utilisant un appareil de culture cellulaire représenté sur la figure 6 de la manière suivante au moyen des supports de culture cellulaire obtenus dans l'exemple 10. La structure de l'appareil de culture cellulaire 100 est maintenant décrite. Un appareil de culture cellulaire 100 représenté sur la figure 6 comprend un récipient de culture 110, un générateur de champ magnétique 120, un système de commande 130, et un dispositif de chauffage 150. Lorsque le système de commande 130 est connecté à une source de puissance, la puissance électrique nécessaire pour actionner chacun des composant de l'appareil de culture cellulaire 100 est fournie. Le récipient de culture 110 est un composant destiné à recevoir la solution de culture et comporte un orifice 111, à travers lequel la solution de culture est introduite et déchargée, à sa partie supérieure. L'orifice 111 est obturé avec un bouchon 112 pour maintenir un état d'étanchéité à l'air dans le récipient de culture 110. Le générateur de champ magnétique 120 est un composant pour engendrer un champ magnétique afin de déplacer les supports de culture cellulaire 1 dans la solution de culture et comprend un électroaimant 121 qui est présent de manière à entourer la périphérie du récipient de culture 110. L'électroaimant 121 est constitué d'une matière de noyau métallique toroïdale 122 et d'un conducteur 123 enroulé en spirale autour de la périphérie de la matière de noyau 122. Le passage d'un courant électrique à travers le conducteur 123 engendre un champ magnétique à proximité du conducteur 123. Lorsqu'un champ magnétique est engendré par le générateur de champ magnétique 120, les supports de culture cellulaire 1 sont attirés à la face du générateur de champ magnétique 120, ce qui fait que les supports de culture cellulaire 1 montent dans la solution de culture. Dans cet état, lorsque la production du champ magnétique est interrompue, les supports de culture cellulaire 1 attirés à la face du générateur de champ magnétique 120 se déposent sous l'action de leur propre poids. En répétant un tel mouvement vertical des supports de culture cellulaire 1, un courant turbulent est engendré dans la solution de culture, ce qui fait que la solution de culture est agitée uniformément et doucement. En outre, le dispositif de chauffage 150 est connecté électriquement au système de commande 130 pour chauffer la solution de culture sous contrôle du système de commande 130. Puis, un procédé pour cultiver des cellules est ensuite décrit. Tout d'abord, les supports de culture cellulaire de l'exemple 10 ont été soumis à une stérilisation en 5 autoclave. Puis, 1 g des supports de culture cellulaire et une suspension contenant 2 x 105 cellules Vero dérivées de tissu rénal de singe vert africain par millilitre (/ml) ont été ajoutés à 100 ml de milieu MEM (solution de culture). Cette solution de culture a été introduite dans le récipient de culture 110 et chauffée à la température de 37 C. Dans cet état, une culture cellulaire a été effectuée pendant trois jours en réglant le générateur de champ magnétique 120 de telle sorte que le champ magnétique soit engendré de manière intermittente à des intervalles réguliers. En outre, l'intensité du champ magnétique à engendrer a été réglée à 0,5 Wb/m2. Une telle opération de culture cellulaire a été 20 effectuée 10 fois dans chacun des exemples et chacun des exemples comparatifs. Dans 5 des 10 cas, les supports de culture cellulaire qui avaient été cultivés pendant trois jours ont été séparés de la solution de culture, puis l'activité métabolique des cellules a été mesurée par la méthode de réduction du bleu Alamar. D'autre part, dans les 5 cas restants, les supports de culture cellulaire qui avaient été cultivés pendant trois jours ont été séparés de la solution de culture et ensuite placés dans 2 ml de solution de trypsine (solution collectrice) pendant 5 minutes pour détacher les cellules des supports de culture cellulaire 1. Puis, les supports de culture cellulaire ont été séparés de la solution de trypsine et l'activité métabolique des cellules a été ensuite mesurée par la méthode de réduction du bleu Alamar. Ces résultats sont présentés sur le tableau 1, avec le taux de déficience en Ca. A cet égard, il faut noter que chaque valeur d'activité métabolique cellulaire indiquée sur le tableau 1 est une valeur relative, la valeur d'activité métabolique cellulaire avant la séparation ou le détachement des cellules des supports de culture cellulaire dans l'exemple comparatif 1 étant définie en tant que valeur égale à 100. En outre, chaque valeur est une valeur moyenne de 5 cas. TABLEAU 1 Taux de Activité métabolique des cellules Type d'apatite déficience Avant - en Ca séparation Après [% en moles] des cellules séparation des cellules Ex. 1 Hydroxyapatite 3 115 30 Ex. 2 Hydroxyapatite 5 130 27 Ex. 3 Hydroxyapatite 11 154 25 Ex. 4 Hydroxyapatite 15 160 24 Ex. 5 Hydroxyapatite 19 151 23 Ex. 6 Hydroxyapatite 23 131 26 Ex. 7 Hydroxyapatite 29 119 29 Ex. 8 Apatite fluorée 12 155 35 Ex. 9 Apatite chlorée 10 148 33 Ex. 10 Hydroxyapatite 3 132 32 Ex. comp. 1 Hydroxyapatite 0 100 53 Ex. comp. 2 Apatite fluorée 0 95 45 Ex. comp. 3 Apatite chlorée 0 88 43 Comme le montre le tableau 1, dans chacun des exemples, la valeur d'activité métabolique des supports de culture cellulaire après écoulement d'une période de temps de trois jours depuis le début de la culture cellulaire (c'est-à-dire avant de séparer ou de détacher les cellules des supports de culture cellulaire) était manifestement supérieure à la valeur indiquée dans chacun des exemples comparatifs. En outre, les résultats mettent en évidence une tendance, dans chacun des exemples, d'augmentation de l'activité métabolique des supports de culture cellulaire après écoulement d'une période de temps de trois jours depuis le début de la culture cellulaire (c'est-à-dire avant de séparer ou de détacher les cellules des supports de culture cellulaire) en choisissant de manière appropriée le taux de déficience en Ca. En outre, dans chacun des exemples, la valeur d'activité métabolique des supports de culture cellulaire a été manifestement réduite en séparant ou en détachant les cellules des supports de culture cellulaire. D'autre part, dans chacun des exemples comparatifs, la valeur d'activité métabolique n'a pas présenté une forte variation même après avoir séparé ou détaché les cellules des supports de culture cellulaire. D'après ces résultats, il a été trouvé que les supports de culture cellulaire conformes à la présente invention permettent aux cellules d'adhérer efficacement à ceux-ci et de croître de manière satisfaisante sur ceux-ci, en plus du fait que les cellules qui se sont développées peuvent être aisément séparées ou détachées des supports de culture cellulaire. En outre, il a été trouvé également que, au moyen des supports de culture cellulaire de la présente invention, il est possible aux cellules de croître plus rapidement (plus efficacement) et il est également possible d'améliorer la capacité de séparation ou de détachement des cellules développées des supports de culture cellulaire en choisissant de manière appropriée le taux de déficience en Ca. * Enfin, il doit être entendu que de nombreuses modifications et additions peuvent être apportées aux formes de réalisation décrites ci-dessus, sans s'écarter du cadre et de l'esprit de l'invention, de la manière définie dans les revendications suivantes. De plus, il doit être également entendu que le présent mémoire concerne le sujet figurant dans la demande de brevet japonais n 2004-220870 (déposée le 28 juillet 2004) qui est expressément citée dans son intégralité à titre de référence dans le présent mémoire. REVENDICATIONS 1. Supports de culture cellulaire (1) ayant une surface à laquelle des cellules peuvent adhérer de telle sorte que les cellules adhérentes se développent sur leurs surfaces, caractérisés en ce que chacun des supports de culture cellulaire (1) a au moins une de leurs surfaces, y compris les régions voisines de celles-ci, constituée principalement d'apatite à base de phosphate de calcium dans laquelle une partie du Ca manque. 2. Supports de culture cellulaire (1) suivant la revendication 1, caractérisés en ce que le taux de déficience en Ca de l'apatite à base de phosphate de calcium dans laquelle une partie du Ca manque est compris dans l'intervalle de 1 à 30 % en moles. 3. Supports de culture cellulaire (1) suivant la revendication 1, caractérisés en ce que la masse volumique de chacun des supports de culture cellulaire (1) est comprise dans l'intervalle de 1,01 à 1,5 g/cm3. 4. Supports de culture cellulaire (1) suivant la revendication 1, caractérisés en ce que chacun des supports de culture cellulaire (1) a une forme de particule. 5. Supports de culture cellulaire (1) suivant la revendication 4, caractérisés en ce que le diamètre moyen de particules des supports de culture cellulaire (1) est compris dans l'intervalle de 10 à 2000 m. 6. Supports de culture cellulaire (1) suivant la revendication 1, caractérisés en ce que l'apatite à base de phosphate de calcium dans laquelle une partie du Ca manque est constituée principalement d'hydroxyapatite dans laquelle une partie du Ca manque. 7. Supports de culture cellulaire (1) suivant la revendication 1, caractérisés en ce que chacun des supports de culture cellulaire (1) comprend une matière de base ayant une surface et une couche de revêtement formée de manière à revêtir la surface de la matière de base, la couche de revêtement étant constituée principalement d'apatite à base de phosphate de calcium dans laquelle une partie du Ca manque. 8. Supports de culture cellulaire (1) suivant la revendication 7, caractérisés en ce que la matière de base 5 est constituée principalement d'une résine. 9. Supports de culture cellulaire (1) suivant la revendication 8, caractérisés en ce que la résine est constituée principalement d'au moins une des résines consistant en un polyamide et une résine époxy. 10. Supports de culture cellulaire (1) suivant la revendication 7, caractérisés en ce que la matière de base contient une matière magnétique. 11. Supports de culture cellulaire (1) ayant chacun une surface à laquelle des cellules peuvent adhérer de telle sorte que les cellules adhérentes se développent sur la surface de ces supports, caractérisés en ce que chacun des supports de culture cellulaire (1) a au moins une de ses surfaces et les régions voisines de celles-ci constituées principalement d'apatite dans laquelle une partie de son élément bivalent manque. 12. Procédé pour la production des supports de culture cellulaire (1) suivant la revendication 1, caractérisé en ce qu'il comprend: une première étape pour l'obtention d'une suspension 25 contenant de l'apatite à base de phosphate de calcium et de l'acide phosphorique; une deuxième étape pour le séchage de la suspension afin d'obtenir une poudre; et une troisième étape pour le frittage de la poudre afin d'obtenir une poudre frittée qui est formée principalement de l'apatite à base de phosphate de calcium dans laquelle une partie du Ca manque, en faisant réagir l'apatite à base de phosphate de calcium et l'acide phosphorique dans la poudre tout en maintenant la structure d'apatite pour produire ainsi l'apatite à base de phosphate de calcium dans laquelle une partie du Ca manque. 13. Procédé pour la production de supports de culture cellulaire (1), procédé qui est utilisé pour la production des supports de culture cellulaire (1) tels que définis dans la revendication 7, caractérisé en qu'il comprend: une première étape pour obtenir une suspension contenant de l'apatite à base de phosphate de calcium et de l'acide phosphorique; une deuxième étape pour le séchage de la suspension afin d'obtenir une poudre; une troisième étape pour le frittage de la poudre afin d'obtenir une poudre frittée qui est formée principalement de l'apatite à base de phosphate de calcium dans laquelle une partie du Ca manque, en faisant réagir l'apatite à base de phosphate de calcium et l'acide phosphorique dans la poudre tout en maintenant la structure d'apatite pour produire ainsi l'apatite à base de phosphate de calcium dans laquelle une partie du Ca manque; et une quatrième étape pour le revêtement d'une matière de base avec la poudre frittée. 14. Procédé pour la production de supports de culture cellulaire (1) suivant la revendication 12, caractérisé en ce que le rapport de mélange de l'apatite à base de phosphate de calcium et de l'acide phosphorique est compris dans l'intervalle de 6:1 à 1:1, en rapport molaire, dans la première étape. 15. Procédé pour la production de supports de culture cellulaire suivant la revendication 12, caractérisé en ce que la température de frittage dans la troisième étape est égale ou inférieure à 1000 C. 16. Procédé pour la production de supports de culture cellulaire suivant la revendication 12, caractérisé en ce que le temps de frittage dans la troisième étape est compris dans l'intervalle de 0,1 à 10 heures. 17. Procédé pour la production de supports de culture 35 cellulaire (1) suivant la revendication 12, caractérisé en ce que le frittage dans la troisième étape est effectué dans l'air atmosphérique. 18. Procédé pour la culture de cellules, caractérisé en ce que la culture de cellules est effectuée en utilisant les supports de culture cellulaire (1) suivant la revendication 1. 19. Procédé pour la culture de cellules, caractérisé en ce que, dans une solution de culture contenant les supports de culture cellulaire (1) suivant la revendication 1 et des cellules, les cellules sont mises en contact avec les supports de culture cellulaire de telle sorte que les cellules adhèrent aux surfaces des supports de culture cellulaire et se développent sur ces surfaces. 20. Procédé pour la culture de cellules suivant la revendication 18, caractérisé en ce que les cellules qui se sont développées sur les supports de culture cellulaire (1) en sont séparées.