Brevet FR2868704A1 — publié le 20051014

La présente invention concerne une méthode pour augmenter la biodisponibilité de principes actifs protéiques en formulations injectables sous-cutanées ou intramusculaires. Les avancées récentes dans le domaine des biotechnologies, et plus particulièrement du génie génétique, ont conduit au développement de nombreux principes actifs protéiques, définis comme les peptides et les protéines, notamment pour une utilisation dans le traitement de pathologies lourdes (cancers, anémies, sclérose multiple, hépatites, etc.) . Cependant, pour ces principes actifs macromoléculaires qui sont fragiles et peu biodisponibles, le développement de formulations stables, efficaces et bien tolérées par le patient reste un véritable challenge. En particulier, à cause de leur faible stabilité dans le tractus gastrointestinal (dégradation à faible pH et protéolyse) et de leur faible perméabilité à travers la barrière intestinale, les principes actifs protéiques ne peuvent être administrés par la voie orale. Dans ce domaine, bien qu'une amélioration de la perméabilité des peptides et protéines à travers la membrane épithéliale soit envisageable, la biodisponibilité orale reste néanmoins inférieure à quelques pour cent, ce qui empêche le développement de formes orales de ces principes actifs. L'administration par voie injectable ou parentérale reste donc dans ce contexte la voie privilégiée d'administration des principes actifs protéiques. Ainsi, le développement de nouvelles formes pharmaceutiques injectables ou de dispositifs d'injection est vraisemblablement plus à même de remporter un succès thérapeutique et commercial que l'utilisation d'une nouvelle voie d'administration, à condition toutefois que les injections assurent la sécurité et l'efficacité désirées. Une revue sur l'état de l'art des nouvelles formes pharmaceutiques des produits issus des biotechnologies a été publiée récemment par G. Orive et al. ("Drug delivery in biotechnology: present and future"; Current Opinion in Biotechnology 14, 2003, 659-664). De nombreuses formulations de peptides et protéines injectables par voie intraveineuse, intramusculaire ou sous-cutanée sont déjà commercialisées ou en cours de développement. Une revue des formulations des principes actifs protéiques disponibles commercialement ou en cours de développement a été publiée récemment par J.L. Cleland et al. ("Emerging protein delivery methods"; Current Opinion in Biotechnology 12, 2001, 212- 219). Comme le montrent ces auteurs, ces formulations nécessitent encore des améliorations importantes, liées à plusieurs problèmes qui restent non résolus. Tout d'abord, la bonne observance du traitement est une préoccupation majeure dans le traitement des populations âgées ou des jeunes enfants, où les injections parentérales répétées sont très mal acceptées. De plus, des effets secondaires fréquents, dus directement à l'injection et au pic de concentration plasmatique, tels que le syndrome pseudogrippal, l'anorexie, l'amaigrissement, les troubles digestifs, etc. sont également observés. Enfin, les concentrations systémiques élevées nécessaires pour que ces principes actifs protéiques produisent l'effet souhaité sur les tissus ou organes visés, sont très souvent responsables d'une toxicité systémique (hématologique...) néfaste et préjudiciable pour le patient; ces concentrations élevées, nécessaires pour se situer dans la fenêtre d'efficacité thérapeutique, sont obtenues par injection fréquente de doses élevées. Les deux premiers problèmes ont trouvé des solutions partielles dans les systèmes de délivrance prolongée de principes actifs protéiques à base de polymères (implants, microsphères, gels), bien que ces systèmes n'aient pas résolu le problème de perte d'activité (dénaturation) et d'agrégation et/ou précipitation, lié aux procédés et aux excipients de formulation utilisés (voir par exemple l'article de M. van de Weert et al.: "Protein instability in poly(lactic-co-glycolic acid) microparticles"; Pharm. Res. 17, 2000, 1159-1167). En revanche, le troisième point, qui relève de l'exposition du patient au principe actif protéique, reste aujourd'hui non résolu, et conduit dans de nombreux cas à l'échappement de ce traitement par le patient. Ce problème est lié à la faible biodisponibilité des principes actifs protéiques, et plus particulièrement des protéines administrées par voie sous-cutanée ou intramusculaire, qui conduit à l'utilisation de doses thérapeutiques élevées. Après administration sous-cutanée (s.c.), la biodisponibilité absolue (versus une administration intraveineuse à la même dose) est couramment comprise entre 12 et 70% pour les protéines de masse molaire supérieure ou égale à 20 000 g/mole (érythropoïétine, interféron-beta, interféron-gamma, etc.); elle peut être légèrement supérieure et atteindre environ 80% pour les protéines de masse molaire plus faible. De même, la biodisponibilité absolue de certaines cytokines telles que l'interféron-beta, après administration intramusculaire (i.m.) est très faible (inférieure ou égale à 10%) (voir par exemple l'article de V. Bocci: "Physicochemical and biologic properties of interferons and their potential uses in drug delivery systems"; Critical Reviews in Therapeutic Carrier Systems 9 (2), 1992, 91- 133). Ce problème de biodisponibilité après administration sous-cutanée persiste également pour les nouvelles formes de bioconjugués protéiques à temps de circulation systémique prolongé, telles que les protéines PEGylées (i.e. sur lesquelles on a fixé de façon covalente des groupements polymères hydrosolubles de type poly(éthylèneglycol) ou (PEG)) , ou les protéines glycosylées (i.e. sur lesquelles on a fixé de façon covalente des groupements polymères hydrosolubles de type mono- ou polysaccharide), comme il a été montré en 2003 dans la revue de P. Caliceti et al. ("Pharmacokinetic and biodistribution properties of poly(ethyleneglycol)protein conjugates"; Advanced Drug Delivery Reviews 55, 2003, 1261-1277). L'origine exacte de la faible biodisponibilité absolue après injection s. c. ou i.m. n'est pas élucidée, mais elle est attribuée par la littérature à une possible dégradation (protéolyse) ou métabolisation du principe actif protéique au site d'injection ou lors du transport lymphatique vers le plasma. La dégradation des cytokines par les protéases après administration s.c. réduit ainsi leur biodisponibilité de plus de 30% (voir par exemple l'article de B. Rouveix: "Clinical pharmacology of cytokines"; Eur. Cytokine Network 8 (3), 1997, 291-293). Une revue de l'état des connaissances sur l'absorption des protéines et les mécanismes de transport vers la circulation sanguine après administration par injection s.c. a été publiée récemment par C.J.H. Porter et al. ("Lymphatic transport of proteins after subcutaneous administration"; J. Pharm. Sci. 89 (3), 2000, 297-310). Enfin, il faut remarquer que si la biodisponibilité des protéines injectées par voie s.c. ou i.m. est faible ( Dans ce contexte, le demandeur a découvert que la formulation des principes actifs protéiques avec des composés lipidiques utilisés comme agents de formulation permet, de façon inattendue, d'augmenter la biodisponibilité absolue de ces principes actifs après administration par voie injectable sous-cutanée ou intramusculaire. Cette augmentation de biodisponibilité permet de répondre aussi bien au problème de dose thérapeutique et de toxicité associé, qu'au problème économique posé par la production du médicament contenant ces principes actifs. Aussi, l'objet de la présente invention est-il de proposer une méthode pour améliorer la biodisponibilité des principes actifs protéiques en formulations injectables sous-cutanées ou intramusculaires. Selon la présente invention, il a été mis en 30 évidence que l'utilisation de lipides comme agents de formulation permettait d'augmenter la biodisponibilité des principes actifs protéiques en formulations injectables sous-cutanées ou intramusculaires. L'objet de la présente invention concerne par conséquent l'utilisation de lipides comme agents de formulation pour augmenter la biodisponibilité de principes actifs protéiques dans des formulations injectables souscutanées ou intramusculaires. Selon l'invention, les lipides sont utilisés sous forme liquide ou solide. Dans un mode avantageux de réalisation, ils sont utilisés sous forme solide. Selon un autre mode particulier de l'invention, les lipides sont choisis dans le groupe constitué par les phospholipides, les mono-, les di- et les triglycérides d'acide gras en C8-C22, les esters d'acide gras, les alcools gras, les glyco-glycérolipides, les sucroesters et leurs mélanges. Selon un autre mode particulièrement avantageux de l'invention, les phospholipides sont choisis dans le groupe comprenant la phosphatidylcholine, le phosphatidylglycérol, le diphosphatidylglycérol, la dipalmitoyl-phosphatidylcholine, la dioléylphosphatidyl- éthanolamine, la dioléylphosphatidylcholine et le dimyristoyl- phosphatidylglycérol, leurs mélanges et leurs dérivés lyso. Selon un autre mode avantageux de la présente invention, les mono-, les di- et les triglycérides sont choisis dans le groupe comprenant les mono-, les di- et les triglycérides en C8 à Cu, notamment les mono-, les di- et les triglycérides des acides caprylique, caprique, laurique, myristique, palmitique, stéarique et leurs mélanges. Selon un mode particulièrement avantageux de la présente invention, les esters d'acides gras sont choisis dans le groupe comprenant les esters d'acides gras en C8 à C22. Selon un autre mode avantageux de la présente invention, les esters d'acides gras sont choisis dans le groupe comprenant les esters d'acide gras en C12 à 018 et leurs mélanges, notamment parmi le palmitate d'éthyle, le myristate d'éthyle, le myristate d'isopropyle, le myristate d'octyldodécyle et leurs mélanges. Selon un mode particulièrement avantageux de la présente invention, le lipide solide est du Précirol ATO 5 (dipalmitostéarate de glycérol atomisé de type I selon la nomenclature de la Pharmacopée Européenne (3ème édition)). Selon l'invention, le principe actif protéique est un peptide ou un dérivé de peptide choisi dans le groupe comprenant les analogues de la somatotropine, la somatomédine-C, l'hormone libératrice de gonadotropine (gonadotropic releasing hormone), l'hormone stimulant les follicules (follicle stimulating hormone), l'hormone libératrice d'hormone lutéinisante (Luteinizing hormone releasing hormone, LHRH) et ses analogues tels que le leuprolide, la nafaréline et la goseréline, les agonistes et les antagonistes de LHRH, le facteur de libération de l'hormone de croissance (Growth hormone releasing factor), la calcitonine, la colchicine, les gonadotropines telles que la gonadotropine chorionique, l'oxytocine, l'octréotide, la somatotropine, la somatropine associée à un amino-acide, la vasopressine, l'hormone adrénocorticotrophique, le facteur de croissance épidermique (Epidermal growth factor), la prolactine, la somatostatine, la somatropine associée à une protéine, la cosyntropine, la lypressine, les polypeptides tels que l'hormone libérant la thyrotropine, la sécrétine, la pancréozymine, l'enképhaline, le glucagon, les agents endocrines secrétés en interne et distribués par le flux sanguin. Parmi les autres agents qui peuvent être délivrés selon l'invention, on peut citer notamment l'antitrypsine alpha 1, le facteur VIII, le facteur IX et les autres facteurs de coagulation, l'insuline et les autres hormones peptidiques, l'hormone de croissance, l'hormone stimulant la corticosurrénale (Adrenal cortical stimulating hormone), l'hormone stimulant la thyroïde (Thyroid stimulating hormone) et les autres hormones pituitaires, la protéine liée à l'hormone parathyroïdique, les interférons alpha, beta, gamma et delta, l'érythropoïétine (EPO), les facteurs de croissance tels que les stimulateurs de colonies de granulocytes (Granulocyte colony stimulating factor, GCSF), les facteurs stimulateurs de colonies macrophages de granulocytes (Granulocyte macrophage colony stimulating factor, GMCSF), le facteur de croissance nerveuse (NGF), les facteurs neurotrophiques tels que le GDNF, les facteurs de croissance similaires à l'insuline (Insulin-like growth factors), l'activateur tissulaire du plasminogène, les CD4, dDAVP, le facteur de nécrose tumorale (TNF), les enzymes pancréatiques, la lactase, les cytokines, les antagonistes du récepteur interleukine-1, l'interleukine-2, le récepteur du facteur nécrose tumorale (TNF), les protéines supprimant les tumeurs (Tumor suppressing proteins), les protéines cytotoxiques, etc. Le principe actif peut également être un mélange de peptides et/ou de protéines tels qu'énumérés ci-dessus. Selon un mode particulièrement avantageux de la présente invention, le principe actif protéique est une cytokine, encore plus avantageusement un interféron, notamment l'interféron a-2b. Les principes actifs protéiques utilisés selon l'invention sont préférentiellement contenus dans des particules de taille comprise entre 0,1 et 100 m, encore plus avantageusement comprise entre 1 et 25 m. Ils sont obtenus par tout procédé connu de l'homme du métier de façon non limitative: lyophilisation, nébulisation, nébulisation-congélation, cristallisation, précipitation, broyage, procédé utilisant un fluide à pression supercritique. La teneur en protéines des particules de principe actif protéique est comprise entre 0,01 et 100%, et ajustée selon les connaissances de l'homme du métier pour obtenir la dose thérapeutique souhaitée. Ces particules de principe actif protéique peuvent contenir également des excipients et additifs couramment utilisés, tels que par exemple des tensioactifs, des polymères, des sucres, des polysaccharides, des sels, des tampons, et d'autres protéines. Les procédés qui peuvent être mis en oeuvre pour obtenir des systèmes contenant un principe actif protéique formulé avec un agent lipidique sont nombreux et classiquement connus de l'homme du métier. Ils sont par exemple basés sur des techniques d'émulsification, dispersion, émulsionextraction de solvant, émulsion à chaud (hot-melt emulsion)refroidissement, émulsion double, émulsion de type (solide-dans-huile)dans-eau, précipitation par basculement de solvant, coacervation (séparation de phase), nébulisation pouvant être suivie d'un refroidissement, perlage (prilling), enrobage en lit fluidisé, encapsulation utilisant un fluide à pression supercritique, extrusion, extrusion-sphéronisation, thermo-formage ou compression (pour les implants). Un procédé d'encapsulation utilisant un fluide à pression supercritique comme solvant ou non-solvant du ou des lipides de la formulation est préférentiellement mis en uvre. Dans ce cas, l'agent lipidique utilisé est de préférence soluble dans le fluide supercritique. Le fluide supercritique est préférentiellement constitué de dioxyde de carbone (CO2), seul ou en présence de cosolvants. Les systèmes formulés obtenus ont des structures de type nanocapsule, microcapsule (structure c ur protéique-écorce lipidique), ou nanosphère, microsphère, implants cylindriques ou discoïdes (structure matricielle lipidique contenant le principe actif protéique dispersé). Ils ont préférentiellement une structure matricielle. Leur teneur en particules de principe actif protéique (taux de charge) est comprise entre 0,1 et 95%, avantageusement entre 0,5 et 25%, encore plus avantageusement entre 1 et 10%. Les systèmes formulés contenant le principe actif protéique ainsi obtenu ont une taille moyenne comprise entre 1 et 500 m. Pour les systèmes formulés particulaires lipidiques, 30 le diamètre moyen est préférentiellement compris entre 10 et 100 m; pour les implants lipidiques, le diamètre moyen est préférentiellement compris entre 10 et 300 m. Préalablement à l'injection, les systèmes particulaires sont redispersés dans un véhicule liquide pour injection sous-cutanée ou intramusculaires. De façon non limitative, il s'agit de solutions aqueuses, et préférentiellement de solutions aqueuses isotoniques, tamponnées, de viscosité définie et ajustée par des polymères hydrosolubles et/ou tensioactifs, et contenant des tensioactifs permettant d'obtenir une dispersion homogène et stable des particules. La composition de ces véhicules liquides pour injection est ajustée par l'homme du métier pour obtenir une dispersion injectable en sous-cutané ou en intramusculaire. La méthode selon l'invention conduit à une augmentation de la biodisponibilité du principe actif protéique et permet d'utiliser des quantités moindres de principes actifs, évitant ainsi l'arrêt du traitement (échappement) lié à la toxicité élevée desdits principes actifs protéiques. Les exemples qui suivent, les tableaux et les figures illustrent l'invention. La figure 1 est une photographie au microscope optique des microparticules Ml après fusion du lipide 25 telles que décrites dans l'exemple 1. La figure 2 représente la concentration sérique en interféron a chez la souris pour une dose d'interféron a-2b de 500 000 UI/souris: (A) 0 à 30 h après l'injection de INFa-2b non enrobé ou de microparticules Ml préparées selon l'exemple 1, (B) 20 à 50 h après l'injection de INFa-2b on enrobé ou de microparticules Ml préparées selon l'exemple 1, (C) 50 à 150 h après l'injection de INFa-2b non enrobé ou de microparticules M1 préparées selon l'exemple 1. La figure 3 représente la concentration sérique en interféron a chez la souris pour une dose de 125 000 UI/souris: (A) 0 à 30 h après l'injection de INFa-2b non enrobé ou de microparticules M2 préparées selon l'exemple 2 et suspendues dans le milieu de l'exemple 4, (B) 20 à 101 h après l'injection de INFa-2b non enrobé ou de microparticules M2 préparées selon l'exemple 2 et suspendues dans le milieu de l'exemple 4. La figure 4 représente illustre la concentration sérique en interféron a chez la souris pour une dose d'interféron a-2b de 125 000 UI/souris: (A) 0 à 30 h après l'injection de INFa-2b non enrobé ou de microparticules M2 préparées selon l'exemple 2 et suspendues dans le milieu selon l'exemple 5, (B) 20 à 80 h après l'injection de INFa-2b non enrobé ou de microparticules M2 préparées selon l'exemple 2 et suspendues dans le milieu selon l'exemple 5. Exemple 1: Préparation de microparticules lipidiques Ml contenant l'interféron a-2b. Les microparticules sont préparées à partir d'un lyophilisat d'interféron a-2b (INF , Gautier Cassara, Argentine) et d'un mélange de glycérides (Précirol ATO 5, Gattefossé, France) solide à température ambiante. Le point de fusion du Précirol ATO 5 est mesuré par analyse enthalpique différentielle à balayage, et trouvé égal à 56,2 C. Préalablement à leur enrobage par le Précirol ATO 5, les particules de lyophilisat protéique INF contenant l'interféron a-2b (IFNa-2b) sont broyées à l'aide d'un mortier, puis tamisées à l'aide d'un tamis de 25 pm. On utilise la fraction tamisée inférieure à 25 pm pour la préparation des microparticules. Le diamètre moyen des particules de lyophilisat protéique broyées et tamisées, déterminé par granulométrie laser, est d'environ 15 pm. La teneur en IFNa-2b des particules protéiques à enrober est mesurée à l'aide d'un kit de dosage immuno- enzymatique (ELISA) spécifique de l'IFNa-2b humain (R&D Systems). Elle est mesurée et trouvée égale à 2,866 x 106 pg d'IFNa-2b par mg de particules à enrober. On introduit 157,45 mg de particules de lyophilisat protéique à enrober et 3 g de Précirol ATO 5 dans un réacteur inox d'un volume interne de 1L. Le réacteur a une pression maximale d'utilisation de 30 MPa et est muni d'une double enveloppe permettant une régulation de température par circulation de fluide caloporteur. Le couvercle du réacteur est équipé d'un dispositif d'agitation pendulaire à entraînement magnétique. Après introduction des particules à enrober et du Précirol ATO 5, on ferme le réacteur et on introduit du dioxyde de carbone dans le réacteur jusqu'a une pression de 9,2 MPa. Durant cette opération d'introduction de dioxyde de carbone, la température est maintenue à 23 C. Le milieu est alors agité avec une vitesse de 210 t/min. On augmente alors graduellement la température du réacteur jusqu'à une valeur de 45 C, ce qui entraîne une augmentation de la pression à une valeur de 20 MPa. Dans ces conditions de température et de pression, le dioxyde de carbone se trouve à l'état supercritique et le Précirol ATO 5 est solubilisé dans le dioxyde de carbone. Le réacteur contient donc une dispersion des particules à enrober dans une solution de Précirol ATO 5. Après 1 heure d'agitation à 45 C et 20 MPa, on diminue graduellement et de manière contrôlée la température du réacteur jusqu'à une température de 17 C. Au cours de ce refroidissement, la pression diminue jusqu'à environ 6,5 MPa. La durée de l'étape de refroidissement est de 30 min. La diminution de température et de pression du milieu provoque une séparation de phase de la solution de Précirol ATO 5 dans le dioxyde de carbone. Le Précirol ATO 5 se dépose à la surface des particules à enrober et un phénomène de granulation se produit conduisant à l'obtention de microparticules contenant des particules protéiques dispersées dans la matrice de Précirol ATO 5. On diminue ensuite la pression du réacteur jusqu'à la pression atmosphérique par échappement contrôlé du dioxyde de carbone vers une ligne d'évent. La durée de cette étape de décompression est de 45 minutes. Dès retour à pression atmosphérique, on ouvre le réacteur et on récupère 2,45 g de microparticules enrobées. Les microparticules sont ensuite tamisées à l'aide d'un tamis de maille 150 pm. Le rendement de tamisage est de 91%. Les microparticules tamisées, référencées M1 dans la suite, sont alors conditionnées dans des flacons en verre et sous atmosphère d'azote. Les microparticules sont observées à l'aide d'un microscope optique muni d'une platine chauffante qui permet de porter les microparticules à une température d'environ 70 C, et de provoquer ainsi la fusion du Précirol ATO 5. Cette observation montre que les microparticules M1 sont constituées de particules protéiques dispersées dans le Précirol ATO 5 (figure 1). La distribution granulométrique des microparticules Ml, déterminée à l'aide d'un granulomètre laser équipé d'une cellule de mesure en voie liquide, est présentée dans le tableau 1. Le diamètre moyen des particules est de 101,5 pm. Tableau 1 Distribution granulométrique des microparticules M1 Microparticules M1 10% 35,24 pm 2 0% 57,4 pm 50% 97,8 pm 80% 142,01 pm 90% 171,15 pm Les microparticules M1 sont analysées par analyse enthalpique différentielle à balayage. Les microparticules Ml sont soumises à une augmentation de température de 10 C à 80 C à une vitesse de 10 C/min. Cette analyse thermique montre que le pic de fusion des microparticules Ml est de 57,9 C, avec une température de début de fusion ("onset") mesurée à 50,7 C. Aucun phénomène endothermique ou exothermique n'est mesuré pour des températures inférieures à 50,7 C. Le taux de charge (TC) des microparticules M1 est mesuré par dosage immunoenzymatique (ELISA) à l'aide d'un kit spécifique de l'IFNa-2b humain (R&D Systems, référence 41100-1). Le taux de charge du lot de microparticules M1 est de 4.1% de lyophilisat protéique, soit un titre de 146 487 pg d'IFNa-2b par mg de microparticules. Exemple 2: Préparation des microparticules lipidiques M2 contenant l'interféron a-2b. Un protocole de préparation identique à celui décrit dans l'exemple 1 est utilisé, à l'exception de la quantité de particules de lyophilisat protéique d'IFNa-2b à enrober, qui est de 77,24 mg pour 3 g de Précirol ATO 5 introduits dans le réacteur de 1L. Après enrobage des particules protéiques selon un mode opératoire identique à celui utilisé dans l'exemple 1, on récupère 2,42 g de microparticules enrobées. Ces microparticules sont tamisées à l'aide d'un tamis de 150 pm. Le rendement de tamisage est de 96,2%. Les microparticules tamisées, référencées M2 dans la suite, sont alors conditionnées dans des flacons en verre et sous atmosphère d'azote. Les microparticules M2 sont observées à l'aide d'un microscope optique après fusion du Précirol ATO 5. On observe que les microparticules M2 sont constituées de particules de lyophilisat protéique dispersées dans le Précirol ATO 5. La distribution granulométrique des microparticules M2, déterminée à l'aide d'un granulomètre laser équipé d'une cellule de mesure en voie liquide, est présentée dans le tableau 2. Le diamètre moyen des microparticules M2 est de 110,5 pm. Tableau 2 Distribution granulométrique des microparticules M2 Microparticules M2 % 32,38 pm 20% 60,01 pm % 105, 6}gym 80% 157,55 pm 90% 191, 9 pm Les microparticules M2 sont analysées par analyse enthalpique différentielle à balayage. Les microparticules M2 sont soumises à une augmentation de température de 10 C à 80 C à une vitesse de 10 C/min. Cette analyse thermique montre que le pic de fusion des microparticules M2 est de 60 C, avec une température de début de fusion ("onset") mesurée à 48,3 C. Aucun phénomène endothermique ou exothermique n'est mesuré pour des températures inférieures à 48,3 C. Le taux de charge des microparticules M2 est déterminé par dosage immunoenzymatique (ELISA) à l'aide d'un kit spécifique de l'IFNa-2b humain (R&D Systems). Le taux de charge (TC) du lot de microparticules M2 est de 1,6% de lyophilisat protéique, soit un titre de 45 893 pg d'IFNa- 2b par mg de microparticules. Exemple 3: Utilisation des microparticules Ml pour améliorer la biodisponibilité de l'interféron a-2b (IFNa-2b) en injection sous-cutanée. 3.1. Mode opératoire. 3.1.1. Préparation des dispersions de microparticules d'interféron a-2b. On utilise le lot de microparticules lipidiques Ml contenant l'interféron a-2b (IFNa-2b) enrobé par le Précirol ATO 5, obtenu en suivant le protocole opératoire décrit dans l'exemple 1. On prépare deux solutions permettant de remettre en dispersion ces microparticules avant injection chez l'animal de la façon suivante: Solution de tensioactif: dans un bécher de 250 mL, on pèse précisément: 5g de Lutrol F68 de la société BASF, - 5g de Solutol HS15 de la société BASF, - 0,15g de Montanox 20PHA de la société SEPPIC, - 8,33g de D-Mannitol de la société CARLO ERBA. On ajoute 100 mL d'eau PPI (préparation pour injection) mesurés à l'aide d'une éprouvette. On maintient sous agitation d'un barreau aimante jusqu'à complète solubilisation des constituants et jusqu'à obtenir une solution limpide. On effectue une filtration stérilisante de cette solution sur filtre 0,2pm PES (filtre seringue Nalgene). - Solution de carboxyméthylcellulose (CMC): dans un bécher de 250 mL: - On verse précisément 100 mL d'eau PPI mesurés à l'aide d'une éprouvette, - On pèse précisément 1,25g de CMC (Blanose 7LF de la société Hercules), - On verse en pluie la CMC dans les 100 mL d'eau 15 PPI sous agitation d'un barreau aimanté. On maintient l'agitation jusqu'à complète dissolution. On effectue une filtration stérilisante de cette solution sur filtre 0,2pm PES (filtreseringue Nalgene). On effectue 7 pesées, de 263 mg +/- 1,5%, que l'on numérote de A à G, de microparticules M1, dans un flacon en verre type I d'un volume de 20 mL, muni d'un septum en bromobutyle pouvant être serti. On calcule pour chaque flacon le volume précis X de solution de reconstitution totale qu'il faut ajouter pour obtenir une concentration finale en interféron a-2b de 3 793 333 pg/mL. On introduit dans le flacon contenant la pesée de microparticules un volume de solution de tensioactif égal à 60% du volume X précédemment calculé. On ferme le flacon par un bouchon en bromobutyle, sans sertir, et on laisse sous agitation pendant 5 minutes à la vitesse de 22 tours/ minute. Après 5 minutes, on arrête l'agitation, on récupère le flacon et on ajoute un volume de solution de CMC égale à 40% du volume X précédemment calculé. On sertit le flacon et on le replace sous agitation pendant 5 minutes à la vitesse de 22 tours/minutes. Le flacon est ensuite placé sur agitateur Vortex Top-Mix 94323 commercialisé par la société Heidolph, pendant 2 secondes en agitation maximum et continue. 3.1.2. Préparation de la solution d'interféron a-2b non 10 enrobé. Une solution contenant l'interféron a-2b Gautier Cassara non enrobé est préparée de façon identique à la solution de redispersion: on effectue 1 pesée de 91,7 mg +/- 1,5%, d'interféron a-2b, dans un bécher de 100 mL, afin d'obtenir une concentration finale en interféron de 3 793 333 pg/mL. La solution obtenue est répartie dans 7 flacons en verre type I d'un volume de 20 mL, munis d'un septum en bromobutyle pouvant être serti. 3.1.3. Traitement des animaux et prélèvements. Le nombre total de souris Swiss mâles, âgées de 8 à 10 semaines, ayant reçu une injection sous-cutanée de microparticules ou d'interféron alpha2b non enrobé est de 70. Chaque souris est numérotée (codage universel de marquage aux oreilles) de 1 à 70, et 7 lots de 10 souris sont formés (lots A à G). Chaque étude de formulation, microparticules ou interféron non enrobé, fait l'objet d'une analyse sur une semaine. Les injections débutent le matin à partir de 9 h. L'injection aux 10 souris constituant le lot A est réalisée en premier. L'injection aux 10 souris du lot B est réalisée à la suite, puis celle du lot C, et ainsi de suite jusqu'au lot G. L'heure exacte de début d'injection de chaque lot est notée, ce qui permet de corriger les résultats en fonction du temps exact, et non théorique, séparant l'injection du prélèvement pour chaque lot. L'aspiration de la suspension de microparticules dans les seringues est réalisée avec une aiguille de 20 Gauge (1 aiguille par lot) et les injections sont réalisées avec des aiguilles de 25 Gauge (aiguille changée pour chaque souris). Les solutions sont homogénéisées sur agitateur Vortex pendant 2 secondes entre chaque prélèvement. Jour Nombre d'heure après injection Lot prélevé Mardi 2 A 4 B C Mercredi 8 D 24 E 26 F 28 G A 32 B Jeudi 48 C 53 D 56 E Vendredi 72 F 77 G Lundi 144 A 149 B Les 10 souris constituant un même lot sont numérotées, et les prélèvements sont réalisés dans le même ordre que les injections, ceci afin que le temps séparant injection et prélèvement soit le même pour toutes les souris d'un même lot. L'heure exacte de début de prélèvement de chaque lot est notée. Les lots de souris d'une même analyse font l'objet de prélèvements tour à tour au cours de la semaine, de façon à ce qu'aucun lot de souris ne subisse plus d'un prélèvement plus d'une fois par jour, selon le protocole suivant: les prélèvements ont été interrompus dès que les dosages ELISA faisaient apparaître une concentration en plus d'une fois par jour, selon le protocole suivant: les prélèvements ont été interrompus dès que les dosages ELISA faisaient apparaître une concentration en interféron a-2b circulant non significative (la limite de quantification pour le test ELISA est de 12,5 UI/mL). Le volume de sang prélevé par souris au niveau du sinus retro-orbital est de 400.L. Les échantillons sanguins sont centrifugés et les sérums sont prélevés et congelés immédiatement, dans l'attente des dosages ELISA. Le dosage de la concentration sérique en interféron a-2b de chaque échantillon recueilli est réalisé par technique ELISA (dosage immunoenzymatique). Pour certains échantillons présentant une concentration d'interféron a-2b circulant dépassant la gamme de dosage ELISA, une dilution a été réalisée avec du tampon PBS, pH 7,4, 0,01% Montanox 20 DF, 0,02% acide de sodium. 3.2. Résultats. L'ensemble des résultats sériques obtenus avec les 25 microparticules M1, est résumé dans le tableau 3 ci-dessous: Tableau 3: Concentration sérique en interféron a-2b humain en fonction du temps après l'injection d'une suspension de 30 microparticules M1 à raison de 500 000 UI par souris. Concentration (pg / mL) Temps théorique Temps réels (H) Moyenne Ecartype 0 0,00 0 0 2 2,75 21051,76 6059,95 4 4,50 10571,51 2565,49 5,17 8141,79 1099,58 8 7,42 5701,16 1240,16 23,50 298,34 97,14 27 25,08 223,47 71,09 29 27,00 247,99 54,49 31 30,50 257,40 54,53 33 32,08 281,83 103,99 48 48,00 121,37 44,90 53 52,42 115,75 37,85 56 55,08 71,51 31,53 72 71,00 61,99 28,96 77 75,42 39,24 15,04 144 144,58 0,00 0,00 149 149,25 0,00 0,00 L'ensemble des résultats sériques obtenus avec l'interféron a-2b (IFNa-2b) Gautier Cassara (INF ) non enrobé, est résumé dans le tableau 4 ci-dessous: Tableau 4 Concentration sérique en interféron a-2b humain en fonction du temps après l'injection d'une solution d'interféron a-2b (INF ) non enrobé à raison de 500 000 UI par souris. Concentration (pg I mL) temps théorique Temps en heures Moyenne Ecartype 0 0,00 0 0 2 2,00 33737,17 5188,49 4 3,75 13749,07 3595,19 4,67 4118,72 830,51 8 7,33 482,33 115,71 23,33 149,19 32,23 27 25,08 100,44 18,73 29 26,92 125,74 34,78 31 30,00 83,13 25,04 33 31,67 77,90 20,24 48 47,67 19,00 12,66 53 52,42 33,33 7,54 56 55,25 15,43 5,25 72 71,42 7,19 5,50 77 75,92 6,34 4,37 Les concentrations en interféron alpha dosées au cours du temps dans le sérum des animaux ayant reçu soit de l'interféron a-2b non enrobé, soit des microparticules Ml sont comparées dans les figures 1A à 1E. L'aire sous la courbe (AUC ou "area under the curve") représentatif de la biodisponibilité absolue de la protéine, calculée par modélisation en triangle et rectangle des aires obtenues entre chaque temps de prélèvements, est rassemblée dans les tableaux 5 et 6 suivants dans lesquels les concentrations sont exprimées en UI/mL et non en pg/mL. (1 UI=6,828 pg d'interféron a-2b Gautier Cassara). Tableau 5 Calcul de l'aire sous la courbe (AUC) : Interféron alpha- 2b non enrobé (en (U I/m L) x h) temps concentration aire triangle aire rectangle aire totale 0 0,000 I I l 2 4941,003 4941,0 I 4941,0 3,75 2013,630 2561,5 3523,9 6085,3 4,67 603,21 1 648,8 555,0 1 203,7 7,33 70,641 708,3 1 87,9 896,2 23,33 21,850 390,3 349,6 739,9 25,08 14,711 6,2 25,7 32,0 26,92 18,415 3,4 27,1 30,5 30,00 12,174 9,6 37,5 47,1 31,67 11,408 0,6 1 9,1 19,7 47,67 2,783 69,0 44,5 113,5 52,42 4,882 5,0 1 3,2 1 8,2 55,25 2,260 3,7 6,4 10,1 71,42 1,053 9,8 1 7,0 26,8 75,92 0,93 0,3 4,2 4,5 Total: I 14168,5 Tableau 6 Calcul de l'aire sous la courbe: Micro particules M 1 temps concentration aire triangle aire rectangle aire totale 0 0,000 / 2,75 3083,151 4239,3 / 4239,3 4,5 1 548,259 1 343,0 2709,5 4052,5 5,1 7 1192,413 119,2 798,9 91 8,1 7,42 834,968 402,1 1878,7 2280,8 23,50 43,693 6361,8 702,6 7064,4 25,08 32,729 8,7 51,7 60,4 27,00 36,319 3,4 62,8 66,3 30,50 37,698 2,4 1 27,1 1 29,5 32,08 41 X276 2,8 59,6 62,4 48,00 1 7,775 187,1 283,0 470,1 52,42 16,952 1,8 74,9 76,7 55,08 10,474 8,6 27,9 36,5 71,00 9,080 11,1 144,6 1 55,6 75,42 5,740 7,4 25,4 32,8 Total: 1 19645,4 L'aire sous la courbe (AUC) obtenue pour les microparticules lipidiques M1 contenant le lyophilisat protéique est supérieure de 38,6% à l'AUC obtenue pour la protéine administrée seule (non enrobée) à la même dose. Exemple 4: Utilisation des microparticules M2 pour 5 améliorer la biodisponibilité de l'interféron a-2b (IFNa-2b) en injection sous-cutanée. 4.1. Mode opératoire. 4.1.1. Préparation de la dispersion de microparticules. On utilise le lot de microparticules lipidiques M2 contenant l'interféron a-2b (IFNa-2b) enrobé par le Précirol ATO 5, obtenu en suivant le protocole opératoire décrit dans l'exemple 2. On prépare les deux solutions permettant de remettre en dispersion ces microparticules avant injection chez l'animal de façon identique à celle de l'exemple 3. On effectue 7 pesées, de 204 mg +/-2%, que l'on numérote de A à G, de microparticules M2, dans un flacon en verre type I d'un volume de 20mL muni d'un septum en bromobutyle, pouvant être serti. On calcule pour chaque flacon le volume précis X de solution de reconstitution totale qu'il faut ajouter pour obtenir une concentration finale en interféron de 948 333 pg/mL. On introduit dans le flacon contenant la pesée des microparticules un volume de solution de tensioactif égal 25 à 60% du volume X précédemment calculé. On ferme le flacon par un bouchon en bromobutyle, sans sertir, et on laisse sous agitation pendant 5 minutes à la vitesse de 22 tours/minute. Après 5 minutes, on arrête l'agitation, on récupère le flacon et on ajoute un volume de solution de CMC égale à 40% du volume X précédemment calculé. On sertit le flacon et on le remplace sous agitation pendant 5 min à la vitesse de 22 t/min. Le flacon est ensuite placé sur agitateur Vortex Top-Mix 94323 commercialisé par la société Heidolph, pendant 2 secondes en agitation maximum et continue. 4.1.2. Préparation de la solution d'interféron a-2b non enrobé. Une solution contenant l'interféron a-2b Gautier Cassara non enrobé est préparée de façon identique: on effectue 1 pesée de 22,9 mg +/- 1,5%, d'interféron a-2b, dans un bécher de 100 mL, afin d'obtenir une concentration finale en interféron alpha-2b de 948 333 pg/mL. La solution obtenue est répartie dans 7 flacons en verre type I d'un volume de 20 mL, munis d'un septum bromobutyle pouvant être serti. 4.1.3. Traitement des animaux et prélèvements. Le nombre total de souris Swiss mâles âgées de 8 à 10 semaines, ayant reçu une injection sous-cutanée de microparticules ou d'interféron a-2b non enrobé est de 70. Chaque souris est numérotée (codage universel de marquage aux oreilles) de 1 à 70, et 7 lots de 10 souris sont formés (lots A à G). Chaque étude de formulation, microparticules ou interféron a-2b non enrobé, fait l'objet d'une analyse sur une semaine. Les injections et les prélèvements sont réalisés en suivant un protocole identique à celui de l'exemple 3. Les lots de souris d'une même analyse font l'objet 30 de prélèvements tour à tour au cours de la semaine, de façon à ce qu'aucun lot de souris ne subisse plus d'un prélèvement plus d'une fois par jour, selon le protocole suivant: Jour Nombre d'heure après injection Lot prélevé Lundi 2 A 4 B C 8 D Mardi 24 E 26 F 28 G A 32 B Mercredi 48 C 53 D 56 E Jeudi 72 F 77 G Vendredi 96 A 101 B Les prélèvements ont été interrompus dès que les dosages ELISA faisaient apparaître une concentration en interféron alpha circulant non significative (la limite de quantification pour ce test ELISA est de 12,5 UI/mL). Le volume de sang prélevé par souris au niveau du sinus retroorbital est de 400 pL. Les échantillons sanguins sont centrifugés et les sérums sont prélevés et congelés immédiatement, dans l'attente des dosages ELISA. Le dosage de la concentration sérique en interféron a-2b humain de chaque échantillon recueilli est réalisé par technique ELISA (dosage immunoenzymatique). Pour certains échantillons présentant une concentration d'interféron a-2b circulant dépassant la gamme de dosage ELISA, une dilution a été réalisée avec du tampon PBS, pH 7,4, 0,01% Montanox 20 DF, 0,02% acide de sodium. 4.2. Résultats. L'ensemble des résultats sériques obtenus avec les microparticules M2, est résumé dans le tableau 7 ci-dessous: Tableau 7 Concentration sérique en interféron a-2b humain des animaux en fonction du temps après l'injection d'une suspension de microparticules M2 à raison de 125 000 UI par souris. Concentration (pg I m L) temps théorique Temps en heures Moyenne Ecartype 0 0,00 0 0 2 2,58 10194,39 3921,13 4 4,00 8183,94 2930,55 4,92 5557,55 3788,00 8 7,50 3606,26 1596,34 23,08 271,62 84,12 27 24,92 324,22 149,05 29 26,75 247,36 109,86 31 30,25 245,73 41,64 33 31,92 243,42 52,81 48 48,17 90,57 41,18 53 52,58 129,82 59,76 56 54,42 98,86 56,60 72 70,92 9,82 9,98 77 75,67 4,22 7,88 96 96,25 0,00 0,00 101 100,75 0,00 0,00 L'ensemble des résultats sériques obtenus avec l'interféron a-2b non enrobé, est résumé dans le tableau 8 ci-dessous. Tableau 8 Concentration sérique en interféron a-2b humain des 15 animaux en fonction du temps après l'injection d'une solution d'interféron alpha non enrobé à raison de 000 UI par souris. Concentration (pg / m L) temps théoriqmps en heure Moyenne Ecartype 0 0 0,00 0,00 2 1,83 8812,16 2776,03 4 4,08 1022,84 618,94 4,92 548,68 266,12 8 7,33 15,89 21,03 23,42 9,17 13,70 27 25 9,40 13,47 29 27,25 0,75 1,25 31 30 5,76 7,31 33 31,66 0,00 0,00 48 47,5 0,00 0,00 53 52,33 0,00 0,00 56 55,17 0,00 0,00 72 71 0,00 0,00 Les concentrations en interféron a dosées au cours du temps dans le sérum des animaux ayant reçu soit de l'interféron a-2b, soit des microparticules M2 sont comparées dans les figures 2A et 2B. L'aire sous la courbe est calculée par la méthode décrite dans l'exemple 3 et rassemblée dans les tableaux 9 et 10 suivants: Tableau 9 Calcul de l'aire sous la courbe (AUC) : Interferon alpha- 2b non enrobé (en (UIImL) x h) temps concentration aire triangle aire rectangle aire totale 0 0,0 I / I 1, 83 1290, 6 1180,9 I 1180,9 4,08 149,8 1283,4 337,1 1620,4 4,92 80,4 29,2 67,5 96,7 7,33 2,3 94,0 5,6 99,6 23,42 1,3 7,9 21,6 29,5 1,4 0,0 2,1 2,1 27,25 0,1 1,4 0,2 1,7 0,8 1,0 0,3 1,3 31,66 0,0 0,7 0,0 0,7 47,5 0,0 0,0 0,0 0,0 52,33 0,0 0,0 0,0 0,0 55,17 0,0 0,0 0,0 0,0 71 0,0 0,0 0,0 0,0 Tableau 10 Calcul de l'aire sous la courbe (AUC) : Microparticules M2 (en (Ul/mL) x h) temps concentration aire triangle aire rectangle aire totale 0,00 0,00 / #VALEUR! / 2,58 1493,03 1926,0 0,0 1926,0 4,00 1198,59 209,1 1702,0 1911,0 4,92 813,94 176,9 748,8 925,8 7,50 528,16 368,7 1362,6 1731,3 23,08 39,78 3804,5 619,8 4424,2 24,92 47,48 7,1 73,2 80,3 26,75 36,23 10,3 66,3 76,6 30,25 35,99 0,4 126,0 126,4 31,92 35,65 0,3 59,5 59,8 48,17 13,26 181,9 215,5 397,4 52,58 19,01 12,7 58,5 71,2 54,42 14,48 4,2 26,6 30,8 70,92 1,44 107,6 23,7 131,3 75,67 0,62 1,9 2,9 4,9 96,25 0,00 6,4 0,0 6,4 100,75 0,00 0,0 0,0 0,0 Total: l 11903,4 1 Total:) 3033,0 L'aire sous la courbe (AUC) obtenue pour les microparticules lipidiques M2 contenant le lyophilisat protéique est multipliée par un facteur 3,9 par rapport à l'AUC obtenue pour la protéine administrée seule (non enrobée) à la même dose. Exemple 5: Utilisation des microparticules lipidiques M2 avec une solution de reconstitution contenant du Lutrol F127, pour améliorer la biodisponibilité de l'interféron a-2b (IFNa-2b) en injection sous-cutanée. 5.1. Mode opératoire. 5.1.1. Préparation de la dispersion de microparticules. On utilise le même lot de microparticules lipidiques M2 d'interféron a-2b (IFNa-2b) enrobé par le PRÉCIROL ATO 5 que celui de l'exemple 4, dont le taux de charge TC est 1,6% en lyophilisat de protéine. On prépare une solution permettant de remettre en dispersion ces microparticules avant injection chez l'animal de la façon suivante: dans un bécher de 250 mL, on pèse précisément: - 3g de Lutrol F68 de la société BASF, - 3g de Solutol HS15 de la société BASF, - 0,09g de Montanox 20PHA de la société SEPPIC, - 5,1g de D-Mannitol de la société CARLO ERBA. On ajoute 100 mL d'eau PPI mesurés à l'aide d'une éprouvette, et on maintient sous agitation d'un barreau aimanté jusqu'à complète solubilisation des constituants et jusqu'à obtenir une solution limpide. On place le bécher dans un bain-marie d'eau glacée. On pèse 7,5 g de Lutrol F127 de la société BASF et on l'incorpore en pluie dans la solution précédente. On maintient l'agitation jusqu'à dissolution complète. On effectue une filtration stérilisante de cette solution sur filtre 0,2pm PES (filtre seringue Nalgene). On effectue 7 pesées, de 204 mg +/-2%, que l'on numérote de A à G, de microparticules M2, dans un flacon en verre type I d'un volume de 20 mL muni d'un septum en bromobutyle pouvant être serti. On calcule pour chaque flacon le volume précis X de solution de reconstitution totale qu'il faut ajouter pour obtenir une concentration finale en interféron de 948 333 pg/mL. On introduit dans le flacon contenant la pesée de microparticules M2 ce volume de solution. On sertit le flacon par un bouchon en bromobutyle, et on laisse sous agitation pendant 10 min à la vitesse de 22 t/min. Le flacon est ensuite placé sur agitateur Vortex Top- Mix 94323 commercialisé par la société Heidolph, pendant 2 secondes en agitation maximum et continue. Les résultats obtenus avec l'interféron a-2b non enrobé tel que décrit dans l'exemple 4 sont utilisés à titre de comparaison. 5.1.2. Traitement des animaux et prélèvements. Le nombre total de souris Swiss mâles âgées de 8 à 10 semaines, ayant reçu une injection sous-cutanée de microparticules ou d'interféron alpha- 2b non enrobé est de 70. Chaque souris est numérotée (codage universel de marquage aux oreilles) de 1 à 70, et 7 lots de 10 souris sont formés (lots A à G). Chaque étude de formulation, microparticules ou interféron non enrobé, fait l'objet d'une analyse sur une semaine. Les injections et les prélèvements sont réalisés en suivant un protocole identique à celui de l'exemple 4. Les lots de souris d'une même analyse font l'objet de prélèvements tour à tour au cours de la semaine, de façon à ce qu'aucun lot de souris ne subisse plus d'un prélèvement plus d'une fois par jour, selon le protocole suivant: Jour Nombre d'heure après injection Lot prélevé Lundi 2 A 4 B C 8 D Mardi 24 E " 26 F " 28 G " 30 A 32 B Mercredi 48 C 53 D 56 E Jeudi 72 F 77 G Vendredi 96 A " 101 B Les prélèvements ont été interrompus dès que les dosages ELISA faisaient apparaître une concentration en interféron a- 2b circulant non significative (la limite de quantification pour ce test ELISA est de 12,5 UI/mL). Le volume de sang prélevé par souris au niveau du sinus retro-orbital est de 400 viL. Les échantillons sanguins sont centrifugés et les sérums sont prélevés et congelés immédiatement, dans l'attente des dosages ELISA. La concentration sérique en interféron alpha-2b humain de chaque échantillon recueilli est mesurée par technique ELISA (dosage immunoenzymatique). Pour certains échantillons présentant une concentration d'interféron a-2b circulant dépassant la gamme de dosage ELISA, une dilution a été réalisée avec du tampon PBS, pH 7,4, 0,01% Montanox 20 DF, 0,02% acide de sodium. 5.2. Résultats. L'ensemble des résultats sériques obtenus avec les microparticules M2 dans la solution de reconstitution à base de Lutrol F127, est résumé dans le tableau 11 ci- dessous. Tableau 11 Concentration sérique en interféron a-2b humain en fonction du temps après l'injection d'une suspension de microparticules M2 à raison de 125 000 UI par souris. Concentration (pg I mL) temps théorique Temps en heures Moyenne Ecartype 0 0,00 0 0 2 2,17 3945,54 1347,67 4 3,92 6366,02 2613,22 4,50 3044,54 1085,99 8 7,08 3202,59 1087,07 23,58 207,89 90,07 27 24,75 218,50 66,70 29 26,58 259,17 96,96 31 30,00 289,06 124,85 33 31,58 384,13 130,94 48 47,67 65,37 46,70 53 52,17 46,15 51,63 56 54,75 28,74 32,74 72 70,92 0,00 0,00 77 75,42 1,92 5,76 96 96,25 3,42 7,95 Les concentrations en interféron a dosées au cours du temps dans le sérum des animaux ayant reçu soit de l'interféron a-2b non enrobé, soit des microparticules M2 reprises dans la solution de reconstitution à base de Lutrol F127 sont comparées dans les figures 3A et 3B. L'aire sous la courbe est calculée par la méthode décrite dans l'exemple 3 et est illustrée dans les tableaux 12 et 13 suivants dans lesquels Les concentrations sont exprimées en UI/mL et non en pg/mL. Rappel 1 UI=6,828 pg d'interféron a-2b Gautier Cassara. 2868704 33 Tableau 12 Calcul de l'aire sous la courbe (AUC) : Interferon alpha- 2b non enrobé (en (U I/m L) x h) temps concentration aire triangle aire rectangle aire totale 0 0,0 / / / 1,83 1290,6 1180,9 / 1180,9 4,08 149,8 1283,4 337,1 1620,4 4,92 80,4 29,2 67,5 96,7 7,33 2,3 94,0 5,6 99,6 23,42 1,3 7,9 21,6 29,5 1,4 0,0 2,1 2,1 27,25 0,1 1,4 0,2 1,7 0,8 1,0 0,3 1,3 31,66 0,0 0,7 0,0 0,7 47,5 0,0 0,0 0,0 0,0 52,33 0,0 0,0 0,0 0,0 55,17 0,0 0,0 0,0 0,0 71 0,0 0,0 0,0 0,0 1 Total: l 3033,0 1 Tableau 13 Calcul de l'aire sous la courbe Microparticules M2; nouvelle solution de remise en suspension (en (Ul/mL) x h) temps concentration aire triangle aire rectangle aire totale 0 0,0 / 2,17 577,8 627,0 / 627,0 3,92 932,3 310,2 1011,2 1321,4 4,50 445,9 141,1 258,6 399,7 7,08 469,0 29,9 1150,4 1180,3 23,58 30,4 3618,4 502,4 4120,8 24,75 32,0 0,9 35,6 36,5 26,58 38,0 5,5 58,6 64,0 30,00 42,3 7,5 129,8 137,3 31,58 56,3 11,0 66,9 77,9 47,67 9,6 375,6 154,0 529,6 52,17 6,8 6,3 30,4 36,7 54,75 4,2 3,3 10,9 14,1 70,92 0,0 34,0 0,0 34,0 75,42 0,3 0,6 0,0 0,6 96,25 0,5 2,3 5,9 8,2 Total: 1 8588,1 L'aire sous la courbe (AUC) obtenue pour les microparticules lipidiques M2 contenant le lyophilisat protéique, redispersées dans une solution de Lutrol F127, est multipliée par un facteur 2,83 par rapport à l'AUC obtenue pour la protéine administrée seule (non enrobée) à la même dose. Le tableau 14 récapitule les valeurs du paramètre AUC, représentatif de la biodisponibilité absolue de la 5 protéine, trouvées dans les exemples 3, 4 et 5. Tableau 14 Formulation TC (%) Dose (U l saisis) AUC (U lrnL) x h Interféron alpha 2b en solution (référence) / 500 000 14169 Maoparticules M1 redispersées dans solution de CMC 4,1 500 000 19645 Interféron alpha 2-b en solution (référence) / 125 000 3033 Maoparticules M2 redspersées dans solution de CMC 1,6 125 000 11903 Manparticules M2 redispersées dans solution de Lutrnl F127 1,6 125 000 8588 REVENDICATIONS 1. Utilisation de lipides comme agents de formulation pour augmenter la biodisponibilité de principes actifs protéiques dans des formulations injectables sous-cutanées ou intramusculaires. 2. Utilisation selon la revendication 1, caractérisée en ce que les lipides utilisés sont des lipides solides. 10 3. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 et 2, caractérisée en ce que les lipides sont choisis dans le groupe constitué par les phospholipides, les mono-, les di-, les triglycérides d'acide gras en C8-22, les esters d'acide gras, les alcools gras, les glycoglycérolipides, les sucroesters et leurs mélanges. 4. Utilisation selon la revendication 3, caractérisée en ce que les phospholipides sont choisis dans le groupe comprenant la phosphatidylcholine, le phosphatidylglycérol, le diphosphatidylglycérol, la dipalmitoylphosphatidylcholine, la dioléyl-phosphatidyléthanolamine, la dioléylphosphatidylcholine et le dimyristoylphosphatidylglycérol, leurs mélanges et leurs dérivés lyso. 5. Utilisation selon la revendication 3, caractérisée en ce que les mono-, les di- et les triglycérides sont choisis dans le groupe comprenant les mono-, les di- et les triglycérides en C8 à C18i notamment les mono-, les di- et les triglycérides des acides caprylique, caprique, laurique, myristique, palmitique, stéarique et leurs mélanges. 6. Utilisation selon la revendication 3, caractérisée en 5 ce que les esters d'acides gras sont choisis dans le groupe comprenant les esters d'acides gras en C8 à C22. 7. Utilisation selon la revendication 6, caractérisée en ce que les esters d'acides gras sont choisis dans le groupe comprenant les esters d'acide gras en Cu à C18 et leurs mélanges, de préférence dans le groupe comprenant le palmitate d'éthyle, le myristate d'éthyle, le myristate d'isopropyle, le myristate d'octyldodécyle et leurs mélanges. 8. Utilisation selon la revendication 2, caractérisée en ce que le lipide solide est du Précirol ATO 5. 9. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 8, caractérisée en ce que le principe actif protéique est un peptide ou un dérivé de peptide choisi dans le groupe comprenant les analogues de la somatotropine, la somatomédine-C, l'hormone libératrice de gonadotropine (gonadotropic releasing hormone), l'hormone stimulant les follicules (follicle stimulating hormone), l'hormone libératrice d'hormone lutéinisante (Luteinizing hormone releasing hormone, LHRH) et ses analogues tels que le leuprolide, la nafaréline et la goseréline, les agonistes et les antagonistes de LHRH, le facteur de libération de l'hormone de croissance (Growth hormone releasing factor), la calcitonine, la colchicine, les gonadotropines telles que la gonadotropine chorionique, l'oxytocine, l'octréotide, la somatotropine, la somatropine associée à un amino-acide, la vasopressine, l'hormone adrénocorticotrophique, le facteur de croissance épidermique (Epidermal growth factor), la prolactine, la somatostatine, la somatropine associée à une protéine, la cosyntropine, la lypressine, les polypeptides tels que l'hormone libérant la thyrotropine, la sécrétine, la pancréozymine, l'enképhaline, le glucagon, les agents endocrines secrétés en interne et distribués par le flux sanguin. 10. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 8, caractérisée en ce que le principe actif protéique est une protéine choisie dans le groupe comprenant l'antitrypsine alpha 1, le facteur VIII, le facteur IX et les autres facteurs de coagulation, l'insuline et les autres hormones peptidiques, l'hormone de croissance, l'hormone stimulant la corticosurrénale (Adrenal cortical stimulating hormone), l'hormone stimulant la thyroïde (Thyroid stimulating hormone), et les autres hormones pituitaires, la protéine liée à l'hormone parathyroïdique, les interférons alpha, beta, gamma et delta, l'érythropoïétine (EPO), les facteurs de croissance tels que les stimulateurs de colonies de granulocytes (Granulocyte colony stimulating factor, GCSF), les facteurs stimulateurs de colonies macrophages de granulocytes (Granulocyte macrophage colony stimulating factor, GMCSF), le facteur de croissance nerveuse (NGF), les facteurs neurotrophiques tels que le GDNF, les facteurs de croissance similaires à l'insuline (Insulin-like growth factor), l'activateur tissulaire du plasminogène, les CD4, dDAVP, le facteur de nécrose tumorale (TNF), les enzymes pancréatiques, la lactase, les cytokines, les antagonistes du récepteur interleukine-1, l'interleukine-2, le récepteur du facteur nécrose tumorale (TNF), les protéines supprimant les tumeurs (Tumor suppressing proteins), les protéines cytotoxiques, etc. 11. Utilisation selon la revendication 10, caractérisée en ce que le principe actif protéique est choisi parmi 10 les cytokines, avantageusement parmi les interférons. 12. Utilisation selon la revendication 11, caractérisée en ce que l'interféron est l'interféron -2b. 13. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 12, caractérisée en ce que les principes actifs protéiques sont contenus dans des particules ayant une taille comprise entre 0,1 et 100 m, de préférence entre 1 et 25 m. 14. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 13, caractérisée en ce que le principe actif protéique est formulé avec des lipides sous forme de nanocapsule, microcapsule (structure c ur protéiqueécorce lipidique), ou nanosphère, microsphère, implants cylindriques ou discoïdes (structure matricielle lipidique contenant le principe actif protéique dispersé), de préférence sous forme d'une structure matricielle. 15. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 14, caractérisée en ce que les systèmes formulés ont une taille comprise entre 1 et 500 m. 16. Utilisation selon la revendication 15, caractérisée en ce que les particules de principe actif protéique sont formulées dans un système particulaire lipidique ayant un diamètre compris entre 10 et 100 m. 17. Utilisation selon la revendication 15, caractérisée en ce que les particules de principe actif protéique sont formulées dans un implant lipidique dont le diamètre est compris entre 10 et 300 m. 18. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 17, caractérisée en ce que les particules de principe actif protéique ont une teneur en principe actif protéique entre 0,01 et 100%. 19. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 18, caractérisée en ce que la teneur des systèmes formulés en particules de principe actif protéique est comprise entre 0,1 % et 95%, avantageusement entre 0,5 et 25%, encore plus avantageusement entre 1 et 10%. 20. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 19, caractérisée en ce que les systèmes formulés sont des microsphères matricielles préparées à partir du Précirol ATO 5 contenant 0,5 à 10%, de préférence de 1 à 30 5% de particules de principe actif protéique. 21. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 20, caractérisée en ce que les microsphères matricielles sont obtenues par encapsulation du principe actif protéique en utilisant un fluide à pression supercritique. 22. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 21, caractérisée en ce que le principe actif protéique est l'interféron a-2b. 23. Microsphères matricielles comprenant du Précirol ATO 5 pour une utilisation comme agent de formulation selon l'une quelconque des revendications 1 à 22 et contenant entre 0,5 et 10%, de préférence entre 1 et 5% en poids de particules de principe actif protéique, ledit principe actif protéique étant l'interféron a-2b.