Brevet FR2859909A1 — publié le 20050325

La présente invention concerne de nouvelles particules biorésorbables sur lesquelles sont liées des substances protéiques, utiles notamment dans le domaine de la vaccination. Les substances protéiques, telles que les protéines et les peptides, également appelées antigènes, sont largement utilisées dans le traitement de nombreuses maladies telles que les maladies d'origine virale, généralement sous forme de formulation vaccinale. Afin d'accroître l'activité, la puissance de l'antigène et d'améliorer la stabilité des compositions pharmaceutiques contenant des antigènes, ces compositions contiennent des adjuvants. A cet égard, les formulations vaccinales comprennent souvent des adjuvants immunologiques pour améliorer les réponses à médiation cellulaire et les réponses humorales. Malgré la présence de tels adjuvants, les vaccins classiques ont souvent pour inconvénients qu'ils proposent une protection inadéquate contre les agents pathogènes visés. Par protection adéquate, on entend une protection mettant en jeu à la fois la réponse à médiation cellulaire et la réponse humorale du système immunitaire. Afin d'obtenir une réponse immunitaire adéquate, on a utilisé des supports particulaires associés à des antigènes, lesdits antigènes étant soit adsorbés sur le support, soit piégés dans le support. De tels supports possèdent de multiples copies de l'antigène d'intérêt présenté au système immun et favorisent le piégeage et la rétention des antigènes dans les nodules locaux lymphatiques. Les particules peuvent être phagocytées par des cellules présentatrices d'antigène et peuvent accroître la présentation des antigènes au système immunitaire. Des exemples de tels supports comprennent les polymères de poly(méthacrylate de méthyle), ainsi que les microparticules à base de polylactides, tels que le poly(acide D- ou L-lactique) connu sous le nom de D-PLA ou L-PLA, respectivement, et de poly(lactides-co-glycolides) connus sous le nom de PLG. Les microparticules à base de PLG dans lesquelles sont piégés des antigènes sont capables de donner une réponse immunitaire. A titre d'exemple, Moore et al. (1995, Vaccine, 13 :1741-1749) ont montré que l'antigène gpl20 du virus VIH microencapsulé induisait une réponse T-cellulaire CD4+ et CD8+ VIH-spécifique. De même, Vordermeier et al. (1995, Vaccine, 13-1576-1582) ont montré que l'antigène de Mycobacterium tuberculosis piégé par du PLG induisait chez la souris vaccinée avec un tel antigène tant une réponse humorale qu'une réponse T-cellulaire. Bien que ces types d'adjuvant offrent quelques avantages par rapport aux autres systèmes plus toxiques, ils ont pour inconvénients que la production de microparticules est difficile et implique l'utilisation de produits chimiques corrosifs, tels que solvants, qui peuvent dénaturer l'antigène et détruire leur immunogénicité. De plus, l'antigène peut également être dégradé du fait de la forte agitation nécessaire lors du procédé de piégeage tel que l'encapsulation. Il a ainsi été proposé d'utiliser des microparticules en surface desquelles les antigènes sont adsorbés ou greffés (Rock K. L., Efficient MHC I presentation of exogeneous Ag, PNAS 1993). Certains auteurs tels que Eldridge et al. dans Infect. Immun., 59 :2978-2986 (1991) ont toutefois indiqué que, pour atteindre un effet d'adjuvant approprié, les antigènes devaient être piégés dans des microparticules. La demande de brevet PCT W097/02810 décrit des particules constituées d'un polymère biodégradable sur lesquelles peuvent être adsorbés des antigènes. Ces particules sont utiles pour la délivrance de ces antigènes. Ces particules ont pour inconvénient leur nature lamellaire, de sorte qu'il n'est pas possible de contrôler leur taille. En effet, les particules destinées à la vaccination doivent posséder une taille submicronique pour être efficaces en transfection et en immunisation. Les demandes de brevet W098/33487 et WOOO/06123 décrivent quant à elles des microparticules à base de polylactide ou PLG sur lesquelles sont adsorbés des antigènes et leur utilisation pour stimuler des réponses immunitaires. Toutes les microparticules de ces demandes de brevet, sur lesquelles des antigènes sont adsorbés, ont été obtenues en utilisant un agent tensioactif afin de maintenir la stabilité colloïdale desdites microparticules, ainsi qu'un agent stabilisant, tel que le poly(alcool vinylique), pour la préparation des particules polymères. Les microparticules ainsi obtenues ont pour inconvénient leur toxicité du fait de la présence dans les microparticules dudit agent tensioactif et dudit agent stabilisant. La Demanderesse a maintenant découvert contre toute attente que l'on pouvait obtenir des microparticules biorésorbables non lamellaires, de taille au plus micronique, sur lesquelles sont liées des substances protéiques antigéniques, contre lesquelles on cherche à déclancher une réponse immunitaire, et dénuées des inconvénients ci-dessus, à savoir qu'elles ne sont pas toxiques car elles sont préparées sans agent stabilisant et sans agent tensioactif pour la préparation des microparticules polymères, et sans agent tensioactif pour la liaison des antigènes à la surface des microparticules, sans perte de stabilité colloïdale. Ainsi, un premier objet de l'invention consiste en un procédé de préparation de microparticules biorésorbables sur lesquelles sont liées des substances protéiques, caractérisées en ce qu'il comprend les étapes de : (i) préparation desdites microparticules à partir d'au moins un polymère biorésorbable sans agent stabilisant et sans agent tensioactif, et (ii) liaison desdites substances protéiques sur les microparticules obtenues dans l'étape (i) sans agent tensioactif. Les microparticules obtenues par le procédé de l'invention sont dénuées d'agent stabilisant et d'agent tensioactif de sorte qu'elles sont nouvelles. Ainsi, un autre objet de l'invention consiste en les microparticules biorésorbables sur lesquelles sont liées des substances protéiques, susceptibles d'être obtenues par le procédé de l'invention. Contre toute attente, les particules de l'invention conservent leur stabilité colloïdale. Les microparticules de l'invention sont utiles pour stimuler tant une réponse à médiation cellulaire qu'une réponse humorale, de sorte qu'elles sont utiles tant en thérapeutique qu'en diagnostic. Ainsi, un autre objet de l'invention consiste en l'utilisation des microparticules de l'invention pour la préparation d'un médicament, ainsi que les compositions pharmaceutiques, notamment vaccins, comprenant les microparticules de l'invention. Enfin, un autre objet de l'invention consiste en l'utilisation des microparticules de l'invention pour le diagnostic in vitro d'états pathologiques liés à la substance protéique liée sur lesdites microparticules. Les microparticules destinées à la vaccination ne doivent pas être toxiques pour l'organisme qui les reçoit, tout en conservant leur stabilité colloïdale. Le procédé de l'invention, n'utilisant ni agent tensioactif, ni agent stabilisant permet contre toute attente l'obtention de telles particules. Par microparticule, on entend des particules de taille au plus micronique pour leur permettre d'entrer dans les cellules présentatrices d'antigènes. Par taille au plus micronique, on entend une dimension inférieure ou égale à 999 m. De préférence, les microparticules ont un diamètre de particule inférieure ou égale à 3 m. De façon davantage préférée, les particules de l'invention sont de taille submicronique, avec, de préférence, un diamètre compris entre 150 et 900 nm, de préférence encore entre 250 et 700 nm. La taille des particules est facilement déterminée par des techniques connues de l'homme du métier telles que, par exemple, en utilisant la microscopie à balayage électronique, la diffusion quasi-élastique de la lumière, la microscopie électronique à transmission. Par microparticule toxique, on entend une microparticule comportant au moins un composé susceptible de provoquer des troubles biologiques, tels que des perturbations du métabolisme, dans l'organisme ayant reçu la microparticule. La première étape du procédé de l'invention consiste en la préparation desdites microparticules à partir d'au moins un polymère biorésorbable sans agent stabilisant et sans agent tensioactif. Par polymère biorésorbable, on entend un polymère capable de se dégrader, dans l'organisme dans lequel il a été introduit, en composés éliminables par les voies naturelles. Des exemples de tel polymère biorésorbable comprennent, sans limitation, les poly(acides a-hydroxylés), les poly(acides hydroxybutyriques), les polycaprolactones, les polyorthoesters et les polyanhydrides. De préférence, le polymère biorésorbable utilisé dans le procédé de l'invention est un poly(acide a-hydroxylé) tel que le poly(acide D-lactique), le poly(acide L-lactique) (appelés PLA), le poly(acide glycolique) (appelé PLG), ou bien un mélange de poly(acides a-hydroxylés) tels qu'un mélange de poly(acides D- et L-lactiques), un mélange de poly(acide L-lactique) et de poly(acide glycolique), un mélange de poly(acide D-lactique) et de poly(acide glycolique), ou un mélange de poly(acides D- et L-lactiques) et de poly(acide glycolique), ce qui constitue un mode de réalisation de l'invention. Lorsque le polymère utilisé dans le procédé de l'invention est un mélange de poly(acides a-hydroxylés), la proportion de chaque constituant peut être facilement déterminée par l'homme du métier. Ainsi, par exemple, on peut utiliser un mélange racémique de poly(acides D- et L-lactiques) ou un mélange PLA/PLG à divers pourcentages connus de l'homme du métier. La préparation des microparticules de l'invention à partir d'au moins un polymère biorésorbable peut être mise en oeuvre par tous procédés de préparation de microparticules connus de l'homme du métier pour lesquels on n'utilise pas d'agent stabilisant et pas d'agent tensioactif. En effet, l'étape (i) du procédé de l'invention se caractérise en ce qu'on n'utilise pas de tels agents. Les agents stabilisants habituellement utilisés dans les procédés de préparation de microparticules comprennent par exemple le poly(alcool vinylique), les Pluronics (copolymère de poly(oxyde d'éthylène) et de poly(oxyde de propylène), des tensioactifs cationiques ou anioniques tels que le bromure de cétyltriméthylammonium ou le sel de sodium du sulfate de dodécyle. Bien entendu, quand l'agent stabilisant utilisé dans les procédés de l'art antérieur est un agent tensioactif, lesdits procédés n'utilisent pas d'agent tensioactif supplémentaire. Les agents tensioactifs habituellement utilisés dans les procédés de l'art antérieur sont largement connus de l'homme du métier et sont décrits par exemple dans la demande de brevet W098/33487. A titre d'exemple de procédé de préparation de microparticules sans agent stabilisant et sans agent tensioactif, on peut citer la dialyse, le déplacement de solvant, l'émulsification-évaporation de solvant et l'émulsification-diffusion, ces dits procédés étant largement connus de l'homme du métier. Par exemple, la dialyse pour préparer les microparticules de l'invention peut être mise en #uvre avec une solution de polymère biorésorbable dans un solvant miscible à l'eau, tel que acétone, DMSO ou DMF, en concentration massique de 0,1 % à 10% mise à dialysée contre 1000 fois son volume d'eau pendant 12 heures. La deuxième étape du procédé de l'invention consiste à procéder à la liaison de substances protéiques sur les microparticules obtenues dans la première étape du procédé, sans utiliser d'agent tensioactif. Cette étape de liaison de la substance protéique à la surface des microparticules a pour caractéristique qu'elle est effectuée sans agent tensioactif. En effet, contre toute attente, même en l'absence d'agent tensioactif, les microparticules de l'invention présentent une stabilité colloïdale assurant un domaine de taille de particules adaptée à l'utilisation en immunisation. A titre d'exemples d'agent tensioactif habituellement utilisé pour la liaison de substances protéiques à la surface de microparticules, on pourra se référer aux tensioactifs cités précédemment. Les substances protéiques à lier à la surface des microparticules obtenues dans l'étape (i) du procédé de l'invention peuvent être toute substance protéique contre lesquelles on cherche à déclancher une réponse immunitaire. Par réponse immunitaire, on entend une réponse à médiation cellulaire, une réponse humorale ou les deux. Par réponse à médiation cellulaire, on entend une réponse médiée par les lymphocytes T et/ou d'autres leucocytes. Cette réponse se traduit par l'induction d'une activité lytique par les lymphocytes T cytotoxiques et/ou par la production de cytokine par les lymphocytes T CD8+ suppressifs ou par les cellules T auxiliaires (helper). Par réponse humorale, on entend une réponse médiée par les molécules anticorps sécrétés par les lymphocytes B. Les substances protéiques appropriées aux fins de l'invention peuvent être de plusieurs origines telles que d'origine virale ou bactérienne. A titre d'exemple de telles substances protéiques, on peut citer par exemple les antigènes et les épitopes ou toute substance protéique ayant un rôle d'antigène après liaison aux microparticules. Les antigènes sont des molécules susceptibles d'être reconnues par un anticorps dont ils ont induit la synthèse par une réponse immunitaire et contenant au moins un épitope. Ce peut être des protéines entières ou des fragments de protéine ayant conservé la structure d'intérêt. Les épitopes sont des peptides comprenant entre 3 et 15et généralement entre 5 et 15 acides aminés, ayant également conservé la structure d'intérêt. Selon un mode de réalisation particulier de l'invention, la substance protéique est un antigène d'origine virale. Lorsque la substance protéique est d'origine virale, les virus appropriés sont tous virus pour lesquels on connaît des substances capables d'une réponse immunitaire. A titre d'exemple, on peut citer, sans aucune limitation, les herpes virus, les virus des hépatites tels que le virus de l'hépatite B (VHB) ou le virus de l'hépatite C (VHC), les papillomas virus (HPV) et les virus de l'immunodéficience humaine (VIH), telsqueVIH-letVIH-2. Les séquences nucléiques des virus appropriés aux fins de l'invention, ainsi que les protéines codées par lesdites séquences sont largement connues de l'homme du métier et sont disponibles par exemple dans des bases de données telles que GenBank. Ainsi, par exemple, le virus VIH a des gènes qui codent pour des protéines structurelles du virus. Le gène gag code pour la protéine qui forme le core du virion, incluant l'antigène p24. Le gène pol code pour les enzymes responsables de la transcription inverse (transcriptase inverse), du clivage (protéase) et de l'intégration (intégrase). Le gène env code pour les glycoprotéines d'enveloppe. Il contient six autres gènes (tat, rev, nef, vif, vpr et vpu (VIH-1) ou vpx (VIH-2)) qui codent pour des protéines impliquées dans la régulation de l'expression des gènes du virus (protéines de régulation). Le génome du VIH comprend également les LTR 5' et 3' (Long Terminal Repeat) qui comprennent des éléments de régulation impliqués dans l'expression des gènes du virus. Selon un mode de réalisation de l'invention, la substance protéique utilisée dans le procédé de l'invention est un antigène du virus VIH. De préférence, l'antigène du virus VIH est une protéine de régulation ou la protéine p24, les protéines de régulation préférées étant la protéine Tat, Rev ou Nef. S'agissant du VHC, l'extrémité 5' de son génome correspond à une région non traduite adjacente aux gènes qui codent pour les protéines structurales, la protéine core de la nucléocapside, les deux glycoprotéines d'enveloppe, El et E2, et une petite protéine appelée p7. La région non traduite 5' et le gène core sont relativement bien conservés dans les différents génotypes. Les protéines d'enveloppe El et E2 sont codées par des régions plus variables d'un isolat à un autre. La protéine p7 est une protéine extrêmement hydrophobe qui constituerait un canal ionique. L'extrémité 3' du génome du VHC contient les gènes qui codent pour les protéines non structurales (NS2, NS3, NS4, NS5) et pour une région 3' non codante possédant un domaine bien conservé (Major ME, Feinstone SM, Hepatology, juin 1997, 25(6) : 1527-1538). La protéine non structurale NS3 du VHC est une protéine de 630 acides aminés qui comprend deux domaines structuraux distincts : un domaine N-terminal, de 81 acides aminés, doté d'une activité protéasique à sérine active intervenant dans la maturation de la protéine virale (domaine appelé NS3 protéase), et un domaine Cterminal, de 549 acides aminés, comprenant une activité hélicase associée à une activité NTPasique qui joue un rôle dans la réplication du génome viral (domaine appelé NS3 hélicase). Cette protéine NS3 est relativement bien conservée parmi les différents génotypes du virus, de sorte que cette protéine constitue un antigène candidat vaccin de choix. Selon un mode de réalisation de l'invention, la substance protéique d'intérêt est une protéine antigénique du VHC, de préférence une protéine non structurale, de préférence encore la protéine NS3 et en particulier le protéine NS3 hélicase étant davantage préférées. Les substances protéiques appropriées aux fins de l'invention peuvent être obtenues par la technique du génie génétique qui comprend les étapes de : - culture d'un microorganisme ou de cellules eucaryotes transformé(es) à l'aide d'une séquence nucléotidique codant pour la substance protéique d'intérêt et - récupération de ladite substance protéique produite par ledit microorganisme ou lesdites cellules eucaryotes. Cette technique est bien connue de l'homme du métier. Pour plus de détail la concernant, on pourra se référer à l'ouvrage ci-après : Recombinant DNA Technology I, Editors Ales Prokop, Raskesh K Bajpai ; Annals of the New-York Academy of Sciences, Volume 646, 1991. Les substances protéiques d'intérêt, lorsqu'elles sont de petites tailles, peuvent également être préparées par les synthèses peptidiques classiques bien connues de l'homme du métier. La liaison des substances protéiques sur les microparticules biorésorbables peut être mise en #uvre par tout procédé connu de l'homme du métier. Des exemples de telle liaison comprennent l'adsorption et la liaison covalente. L'adsorption peut être mise en #uvre par exemple en mélangeant les microparticules avec les substances protéiques et en incubant sous agitation, par exemple à température ambiante ou à 37 C. La liaison covalente des substances protéiques à la surface des microparticules peut être mise en #uvre en utilisant les techniques et réactifs connus dans la littérature, comme par exemple décrit dans Bioconjugate Techniques, G. T. Hermanson, Academic Press, London, 1996 et Chemical Reagents for Protein Modification, R. L. Lundblad, Ed. CRC Press, 1991. Selon un mode de réalisation particulier, la liaison des substances protéiques sur les microparticules est mise en #uvre par adsorption. Les microparticules biorésorbables sur lesquelles sont liées de substances protéiques, préparées selon le procédé de l'invention, sont dénuées d'agent stabilisant et d'agent tensioactif, de sorte qu'elles sont nouvelles et constituent un autre objet de l'invention. Les microparticules de l'invention, du fait de leur capacité à induire une réponse immunitaire grâce à la substance protéique, et du fait de leur absence de toxicité, sont particulièrement bien adaptées pour la préparation de compositions pharmaceutiques, notamment vaccins, utiles dans le traitement de pathologies associées à la substance protéique liée aux microparticules. Ainsi, un autre objet de l'invention consiste en l'utilisation des microparticules biorésorbables de l'invention pour la préparation d'un médicament. En particulier, le médicament préparé avec les microparticules de l'invention est particulièrement utile pour l'inhibition, la prévention ou le traitement d'une infection provoquée par un virus, tel que par exemple le virus VIH ou VHC ou tout autre virus connu, ce qui constitue un autre mode de réalisation de l'invention. L'invention concerne également une composition pharmaceutique, notamment vaccin, contenant au moins une microparticule de l'invention et le cas échéant un excipient pharmaceutiquement acceptable. Bien entendu, l'homme du métier déterminera facilement l'excipient approprié et la quantité de microparticules à utiliser en fonction des constituants de la composition pharmaceutique. Les microparticules de l'invention permettent également d'obtenir des anticorps, ce qui constitue un autre objet de l'invention. Les anticorps selon l'invention sont des anticorps polyclonaux ou monoclonaux, les anticorps monoclonaux étant préférés. Les anticorps polyclonaux sus-mentionnés peuvent être obtenus par immunisation d'un animal avec au moins une microparticule de l'invention, suivie de la récupération des anticorps recherchés sous forme purifiée, par prélèvement du sérum dudit animal, et séparation desdits anticorps des autres constituants du sérum, notamment par chromatographie d'affinité sur une colonne sur laquelle est fixée un antigène spécifiquement reconnu par les anticorps, notamment celui de la microparticule de l'invention. Les anticorps monoclonaux peuvent être obtenus par la technique des hybridomes dont le principe général est rappelé ci-après. Dans un premier temps, on immunise un animal, généralement une souris, (ou des cellules en culture dans le cadre d'immunisations in vitro) avec au moins une microparticule de l'invention, dont les lymphocytes B sont alors capables de produire des anticorps contre ladite microparticule. Ces lymphocytes producteurs d'anticorps sont ensuite fusionnés avec des cellules myélomateuses "immortelles" (murines dans l'exemple) pour donner lieu à des hybridomes. A partir du mélange hétérogène des cellules ainsi obtenu, on effectue alors une sélection des cellules capables de produire un anticorps particulier et de se multiplier indéfiniment. Chaque hybridome est multiplié sous la forme de clone, chacun conduisant à la production d'un anticorps monoclonal dont les propriétés de reconnaissance vis-à-vis de la microparticule de l'invention pourront être testées par exemple en ELISA, par immunotransfert en une ou deux dimensions, en immunofluorescence, ou à l'aide d'un biocapteur. Les anticorps monoclonaux ainsi sélectionnés, sont par la suite purifiés notamment selon la technique de chromatographie d'affinité décrite ci-dessus. Les microparticules, ainsi que les anticorps de l'invention sont également utiles dans le diagnostic de l'état pathologique associé à la substance protéique liée à la surface de ladite microparticule. En effet, les microparticules ou anticorps de l'invention, peuvent être utilisés en tant que partenaire de capture ou de détection d'analyte dans toute technique de diagnostique utilisant de tels partenaires, telle que la méthode ELISA. Par exemple, lorsqu'on veut rechercher un antigène à titre d'analyte, on utilise un anticorps de l'invention obtenu à partir de microparticules sur lesquelles sont liées ledit antigène, tandis que si on veut chercher des anticorps, on utilise les microparticules de l'invention. Dans ce dernier cas, si le test diagnostic nécessite l'utilisation d'un support solide, les microparticules peuvent ou non jouer ce rôle. Ainsi, un autre objet de l'invention consiste en une composition diagnostique constituée des microparticules biorésorbables ou des anticorps de l'invention. Elle concerne également l'utilisation de cette composition diagnostique pour le diagnostic in vitro de l'état pathologique lié à la substance protéique liée à la microparticule biorésorbable, l'état pathologique pouvant être, selon un mode de réalisation, une infection virale, telle que provoquée par le virus VIH ou le virus VHC. Là encore, l'homme du métier déterminera facilement la quantité de microparticules ou anticorps à utiliser en fonction de la technique diagnostique utilisée. La présente invention sera mieux comprise à l'aide des exemples suivants donnés uniquement à titre illustratif et non limitatif, ainsi qu'à l'aide de la figure 1 donnant le résultat de tests CTL en immunisant des souris avec la séquence d'ADN correspondant à la polyprotéine NS3NS4 du VHC à titre de témoin (figure lA), avec la substance protéique NS3 hélicase et l'adjuvant de Freund, sans microparticule (figure 1B), avec la substance protéique NS3hélicase sans microparticule (figure 1C), avec des microparticules de PLA sans substance protéique (figure 1D), et avec les microparticules de l'invention dans lesquelles le polymère est le PLA et la substance protéique est le peptide NS3 hélicase (figure lE). Exemple 1 : de microparticules de l'invention 1 Préparation de particules de PLA On a utilisé du PLA 50 (50% de poly(acide L-lactique) et 50% de poly(acide Dlactique)) de masse molaire 52000 Da (Phusis). On a dissous ce PLA à 2% en poids total de solution dans du DMSO (Prolabo). On a ensuite introduit la solution organique de PLA dans un boudin de dialyse de Cut Off 15000 Da (Spectrum) et on a placé l'ensemble dans un bain-marie d'eau bidistillée (41, MilliQ@) agité et changé régulièrement toutes les heures, pendant 6 h. On a poursuivi le dernier bain de dialyse toute la nuit pour obtenir des particules en précipité. Le lendemain, on a récupéré la solution de particules de PLA et on l'a stockée à 4 C. On a caractérisé les particules ainsi obtenues par leur taille, leur indice de polydispersité et leur charge à l'aide de l'appareil Zetasizer 3000 HS (Malvern Instruments). On a également évalué leur taux de solide après pesée par le calcul : (Masse extrait sec/Masse extrait humide) x 100. 2 Préparation de particules de PLA/p24 On a préparé la protéine p24 du VIH-1 sous forme recombinante dans E. coli et on l'a purifiée par chromatographie par affinité métal-chélate selon la technique de Cheynet V., et al., 1993, Protein Expr. Purif., 4 :367-372. Les microparticules de PLA ont été préparées comme décrit dans le point 1 cidessus et ont un diamètre de particule de 515,7 +/- 6,7 nm, un taux de solide de 1,1% et un indice de polydispersité de 0,242 +/- 0,013. On a préparé un tampon phosphate 1 OmM, pH 5,7 en mélangeant 10 ml de tampon phosphate 0,1 M, pH 4.7 (NaH2P04, 2 H20, M=15,60g/l) et 1,1 ml de tampon phosphate 0,1M, pH 9,2 (NaH2P04, 2 H20, M=17,79g/1) et on a dilué au 1/10è avec de l'eau. On a mélangé 200 l de la protéine p24 diluée à 0,6 g/1 dans le tampon phosphate lOmM, pH 5,7 et 200 l des microparticules, et on a agité toute la nuit sur roue à température ambiante. On a ensuite centrifugé 5 min à 5000 tpm et on a vidé le surnageant qui a permis de doser la quantité de p24 non adsorbée (kit BCA Protein Assay de PIERCE) et d'en déduire la concentration de p24 adsorbée sur les microparticules qui s'élève à 0,2 g/1. 3 Préparation des microparticules de PLA/Tat On a utilisé la protéine Tat du VIH-1, de séquence SEQ ID N 1, synthétisée selon le mode opératoire décrit dans Péloponèse J. P., et al., 1999, The Journal of Biological Chemistry, 274(17) : 11473-11478. Les microparticules de PLA ont été préparées comme décrit dans le point 1 cidessus et ont un diamètre de particule de 420,1 +/- 10,7 nm, un taux de solide de 1,02% et un indice de polydispersité de 0,241 +/- 0,040. On a mélangé 200 l de la protéine Tat diluée à 0,4 g/1 dans un tampon phosphate 10mM, pH 6,8 dégazé, préparé comme indiqué dans le point 1 ci-dessus, à ceci près qu'on a utilisé 13,8 ml de tampon phosphate 0,1 M, pH 9,2, et 200 l des microparticules, et on a agité toute la nuit sur roue à température ambiante. On a ensuite centrifugé 5 min à 5000 tpm et on a vidé le surnageant qui a permis de doser la quantité de Tat non adsorbée (kit BCA Protein Assay de PIERCE) et d'en déduire la concentration de Tat adsorbée sur les microparticules qui s'élève à 0,1 g/1. 4. Préparation des microparticules de PLA/NS3 hélicase On a utilisé le peptide NS3 hélicase de séquence SEQ ID N 2 du VHC obtenu sous forme recombinante comme suit. Le gène codant pour les acides aminés 1192-1458 correspondant au domaine hélicase de la protéine NS3 du VHC en fusion avec l'hexahistidine a été cloné dans le vecteur d'expression procaryote pMH80 et exprimé dans les bactéries E. coli JM109 (Promega). L'expression de la protéine recombinante a été réalisée à 30 C après 3 heures d'induction par l'IPTG lmM (isopropyl-beta-D-thiogalactopyranoside, Promega). Après centrifugation, les bactéries ont été lysées par sonication dans la solution tampon : Tris-HCLl OmM, pH8, MgC12 5mM, Triton X100 1%, anti-protéase 1 pastille (Boehringer) bensonase 250U (Merck). Après lyse et centrifugation, la fraction soluble a été purifiée sur colonne de Ni-agarose et éluée dans la solution tampon phosphate de sodium 20mM pH7,2, NaCl 300mM et imidazole 300mM. La protéine pure a été ainsi dialysée contre du PBS pH 7,2. Après purification, la protéine a été analysée en électrophorèse en gel d'acrylamide en présence de dodécylsulfate de sodium (SDS), spectrométrie de masse. Le degré de pureté de la protéine NS3, domaine helicase, est estimé à supérieur 95%. On a vérifié l'absence d'endotoxine en mesurant le dégré d'endotoxines (LPS) par un test LAL et fonctionnel in vitro. Les microparticules de PLA ont été préparées comme décrit dans le point 1 cidessus et ont un diamètre de particule de l'ordre de 600 nm, un taux de solide de 1 % et un indice de polydispersité de 0,2. On a mélangé 200 l du peptide NS3 hélicase dilué à 0,327 g/1 dans un tampon phosphate 10mM, pH 6,5, préparé comme décrit dans le point 1 ci-dessus, à ceci près qu'on a utilisé 6,8 ml de tampon phosphate 0,1 M, pH 9,2, et 200 l des microparticules, et on a agité toute la nuit sur roue à température ambiante. On a ensuite centrifugé 5 min à 5000 tpm et on a vidé le surnageant qui a permis de doser la quantité de NS3 hélicase non adsorbée (kit BCA Protein Assay de PIERCE) et d'en déduire la concentration de NS3 hélicase adsorbée sur les microparticules qui s'élève à 0,28 g/1. Exemple 2: Immunisation de souris avec les microparticules de l'invention PLA/p24 1. Modèle animal Les expériences d'immunisation ont été réalisées chez des souris BALB/c (H- 2d) femelles âgées de 6 à 8 semaines au moment de la première immunisation. 2. Immunogènes administrés Dans cette expérience, on a utilisé la protéine p24 seule, les microparticules de l'invention PLA/p24 préparées comme indiqué dans l'exemple 1, point 2 ci-dessus, ainsi que la composition p24-adjuvant de Freund (Sigma) préparée sous forme d'émulsion eau-dans-huile et dont il est connu qu'elle présente un bon pouvoir immunogène (témoin positif). 3 . Immunisations Les souris ont reçu 3 doses successives (40 g ou 10 g chacune) des immunogènes décrits dans le point 2 ci-dessus à 0,2 et 4 semaines. Toutes les injections ont été réalisées par voie sous-cutanée. Les animaux ont été sacrifiés 10 jours (J38), 14 jours (J42) ou bien 42 jours (J70) après la troisième injection et le sang et la rate ont été prélevés pour les analyses immunologiques 4. Analyses immunologiques On a recherché la réponse humorale et la réponse cellulaire comme suit : - Réponse humorale : on a effectué un prélèvement de sang sur les souris avant leur sacrifice. La présence des anticorps anti-p24 (IgGl, IgG2a et IgG) a été déterminée par ELISA. La protéine p24 a été utilisée en capture et les anticorps spécifiques présents dans le sérum ont été révélés par des anticorps polyclonaux anti-souris à titre d'anticorps de détection, lesquels se lient aux anticorps recherchés et sont respectivement un anticorps de chèvre anti-IgGl de souris marqué à la peroxydase de raifort (Southem Biotechnology Associates Inc., Cat no 1070-05, Birmingham, Alabama, USA), un anticorps de chèvre anti-IgG2a de souris marqué à la peroxydase de raifort (Southem Biotechnology Associates Inc., Cat no 1080-05), et un anticorps de chèvre anti-IgG de souris AffiniPure conjugué à la peroxydase de raifort (H+L, Jackson Immunoresearch, Cat no 115-035-062). Le titre est l'inverse de la dilution pour laquelle on obtient une absorbance de 0,3 unité DO avec le protocole ELISA utilisé. Le ratio des isotypes IgG2a : IgGlqui permet de juger de la tendance IFN-y - IL-4 (respectivement Thl - Th2) de la réponse immune a aussi été déterminé par ELISA indirect. - Réponse cellulaire : après sacrifice des souris, les rates ont été prélevées de façon stérile pour préparer une suspension cellulaire. Les analyses suivantes ont été pratiquées sur les suspensions cellulaires obtenues, chaque souris ayant été analysée de manière individuelle (i) Test CTL : La suspension cellulaire a été mise en culture en présence d'un peptide de 9-mer (AMQMLKETI, SEQ ID N 3) qui correspond à un épitope CTL H- 2Kd-restreint immunodominant, et d'IL-2. Cinq jours plus tard, la population effectrice a été restimulée par des cellules naïves irradiées, chargées avec le peptide. La population cytotoxique effectrice a été récoltée au bout du 7ème jour et l'activité CTL a été mesurée en utilisant comme cibles les cellules P815 marquées au 51Cr. (ii) ELISPOT : L'ELISPOT permet de déterminer le nombre de cellules sécrétant une cytokine donnée en réponse à un stimulus spécifique. Nous nous sommes intéressés à la cytokine IFN-y (Thl). Les suspensions cellulaires obtenues à partir des rates ont été restimulées in vitro par le peptide AMQMLKETI pendant 20h pour analyser les réponses de type CD8. Les plaques d'ELISPOT 96 puits avec des membranes de PVDF (Multiscreen IP, Millipore) ont été coatées par un anticorps anti-IFN-y. Pendant la restimulation, les suspensions de splénocytes ont été incubées dans ces plaques de manière à capturer les cytokines sécrétées par chaque cellule. Les spots correspondant à chaque cellule sécrétant la cytokine d'intérêt ont été révélés par un anticorps de détection biotinylé spécifique de la cytokine d'intérêt. (iii) Prolifération : Les splénocytes ont été stimulées en présence de la protéine p24 pendant 5 jours. Les cellules ont été pulsées pendant 18h par de la thymidine trititée, qui s'incorpore dans l'ADN des cellules qui sont en train de proliférer. A la suite du pulse, les cellules ont été récoltées sur une membrane qui retient l'ADN et permet d'éliminer par lavage la thymidine marquée non incorporée. Plus les cellules prolifèrent en réponse au stimulus spécifique, plus l'ADN est marqué ;en d'autres termes, plus la réponse cellulaire contre l'immunogène (p24) est importante. 5 Résultats Une première série d'expérience a été réalisée avec 15 souris (5 souris par bras), trois doses de 10 g d'immunogène et un sacrifice des souris à J38, et en recherchant la réponse humorale et le test CTL et la prolifération à titre de réponse cellulaire. Les résultats sont indiqués dans le tableau 1 ci après : Tableau 1 p24 seule p24/Freund p24/PLA Prolifération (Acpm)a 3000 3900 8000 CTLb 0/5 0/5 0/5 Anticorps IgGl (titre) 0,lxl05 10x105 7x105 a Moyenne des valeurs cpm (stimulation spécifique - stimulation milieu), cpm = coups par minute (Test de Student, P=0,002) b Nombre de souris ayant une activité CTL spécifique sur le nombre de souris total du bras Moyenne géométrique des titres IgGl anti-p24 des souris du bras Ce tableau met en évidence que : - on obtient des réponses prolifératives améliorées avec les microparticules de l'invention p24/PLA, par rapport à la protéine p24 seule ou adjuvantée par du Freund, - aucune activité CTL n'est détectée avec l'un quelconque des immunogènes, et - les microparticules de l'invention p24/PLA permettent d'obtenir un titre en anticorps spécifique largement supérieur à celui obtenu lors de l'administration de p24 seule, les réponses obtenues étant dans l'ordre de grandeur des titres en anticorps obtenus avec la combinaison p24/adjuvant de Freund. On a répété l'expérimentation avec 13 souris (3 ou 4 souris par bras), à ceci près qu'on a utilisé les immunogènes à raison de 40 g et que le sacrifice des souris a été effectué soit à J42 (3 souris), soit à J70 (4 souris). Les résultats sont indiqués dans le tableau 2 ci-dessous. Tableau 2 p24 seule p24/Freund p24/PLA p24/PLA J42 J70 ELISPOT IFN-y CD8a 6 100 50 330 CTLb 0/3 0/3 0/3 4/4 Anticorps IgGl (titre)' 0,7x105 10xl05 8x105 30x105 Moyenne du nombre de cellules sécrétant de l'IFN-#039 / 10 cellules totales, en réponse à un stimulus spécifique (peptide AMQMLKETI) de 20h b Nombre de souris ayant une activité CTL spécifique sur le nombre de souris total du bras Moyenne géométrique des titres IgGl anti-p24 des souris du bras Les résultats dans le tableau mettent en évidence que : - si on compare les titres en anticorps reportés dans le tableau 1 et ceux reportés ici dans le tableau 2, augmenter la dose de 10 g à 40 g permet de donner des résultats comparables, et - une réponse à plus long terme après la dernière injection, traduite par un sacrifice plus tardif des souris, permet de mettre en évidence une réponse CTL chez toutes les souris du groupe p24/PLA, ainsi qu'une réponse en ELISPOT et en titres d'anticorps améliorés. Exemple 3: Immunisation de souris avec les microparticules de l'invention PLA/Tat On a répété le mode opératoire indiqué dans l'exemple 2, à ceci près qu'on a utilisé comme immunogène les microparticules de PLA/Tat telles que préparées dans l'exemple 1, point 3 ci-dessus, la protéine Tat seule et la combinaison protéine Tat/adjuvant de Freund (Sigma) préparée sous forme d'émulsion eau-dans-huile,que les dose d'injection étaient chacune de 20 g, que pour la réponse humorale, on a utilisé en tant que partenaire de capture la protéine Tat et en tant que partenaire de détection les anticorps polyclonaux de souris tels qu'indiqués dans l'exemple 2, point 4 ci-dessus, et que pour la réponse humorale, on a effectué uniquement un test ELISPOT en utilisant comme stimulus soit les 6 peptides tels qu'indiqués ci-après, pendant 20h pour analyser les réponses de type CD8, soit la protéine Tat pendant 42h pour analyser les réponses de type CD4. Peptides utilisés dans le test ELISPOT (Sygma Genosys) CFHCQVCFTKKGLGI (SEQ ID N 4) SYGRKKRRQRRRSPQ (SEQ ID N 7) VCFTKKGLGISYGRK (SEQ ID N 5) KRRQRRRSPQDSETH (SEQ ID N 8) KGLGISYGRKKRRQR (SEQ ID N 6) RRSPQDSETHQVSLS (SEQ ID N 9) Les résultats sont indiqués dans le tableau 3 ci-dessous. Tableau 3 Tat seule Tat/Freund Tat/PLA ELISPOT IFN-y CD8a 3 3 24 ELISPOT IFN-y CD4b 4 et 6 4 et 8 28 et 50 Anticorps IgG (titre)' 0,1x105 0,2xl05 1,7x105 Anticorps IgG2a (fréquence)d 2/4 1/4 3/4 Anticorps IgG2a (titre)' 730 560 3900 @ Moyenne uu nomore ue cellules sécrétant de l'IFN-#039 / 10 cehuies totaies, en réponse à un stimulus spécifique (pools de peptide) de 20h b Moyenne du nombre de cellules sécrétant de l'IFN-y / 106 cellules totales, en réponse à un stimulus spécifique (protéine Tat) de 42h c Moyenne géométrique des titres IgG totales anti-Tat des souris du bras d Nombre de souris ayant une réponse IgG2a spécifique sur le nombre de souris total du bras e Moyenne géométrique des titres IgG2a anti-Tat des souris qui ont répondu Les résultats dans le tableau 3 ci-dessus mettent en évidence que : - l'injection des microparticules de l'invention permet d'induire des cellules sécrétant de l'IFN-y alors que l'injection de la protéine Tat seule ou de la composition Tat/Freund et - la liaison de la protéine Tat sur les PLA permet d'améliorer les titres en anticorps (IgG totales) d'environ 1 log par rapport aux titres obtenus avec la protéine Tat seule ou adjuvantée en Freund qui sont de l'ordre de 104. L'utilisation des microparticules Tat/PLA permet d'améliorer à la fois la fréquence et le titre des IgG2a anti-Tat. Exemple 4: Immunisation de souris avec les microparticules de l'invention PLA/NS3 hélicase 1. Modèle animal Les expériences d'immunisation ont été réalisées chez 14 souris C57BL/6 trangéniques pour la molécule HLA-A2 (Pascolo S., et al. (1997), J. Exp Med., 185 (12), 2043-2051). 2. Immunogènes administrés Dans cette expérience, on a utilisé de l'ADN nu correspondant à la séquence en acides nucléiques NS3NS4 (SEQ ID N 10) à titre de témoin positif, le peptide NS3 hélicase seul, les particules de PLA seules, telles que préparées dans l'exemple 1, points 1 et 4 ci-dessus, la composition NS3 hélicase/adjuvant de Freund (Sigma) préparée sous forme d'émulsion eau-dans-huile , ainsi que les microparticules de l'invention PLA/NS3 hélicase telles que préparées dans l'exemple 1, point 4 ci-dessus. 3. Immunisations Les souris ont reçu 3 doses successives des immunogènes décrits dans le point 2 ci-dessus, à 0,2 et 4 semaines, à raison de 50 g chacune dans le cas des protéines ou de 100 g chacune dans le cas de l'ADN nu. Toutes les injections ont été réalisées par voie sous-cutanée, à l'exception de l'ADN nu qui a été administré par voie intramusculaire. Les animaux ont été sacrifiés environ 70 jours (J70) après la première injection et le sang et la rate ont été prélevés pour les analyses immunologiques 4. Analyses immunologiques On a recherché la réponse cellulaire CTL comme suit : après sacrifice des souris, les rates ont été prélevées de façon stérile pour préparer une suspension cellulaire. La suspension cellulaire a été mise en culture en présence du peptide KLV (KLVALGVNAV, SEQ ID N ll), qui correspond à un épitope CTL contenu dans la protéine NS3, et d'IL-2. Cinq jours plus tard, la population effectrice a été restimulée par des cellules naïves irradiées, chargées avec le peptide. La population cytotoxique effectrice a été récoltée au bout du 7ème jour et l'activité CTL a été mesurée en utilisant comme cibles les cellules P815 marquées au 51Cr. 5. Résultats Les résultats sont indiqués sur la figure 1 représentant des graphes donnant le pourcentage de lyse spécifique en fonction du ratio effecteurs/cibles et où la figure 1A donne la réponse cellulaire induite après injection de la séquence d'ADN correspondant à la polyprotéine NS3NS4 du VHC à titre de témoin, la figure 1B donne la réponse cellulaire induite après injection de la combinaison NS3 hélicase/adjuvant de Freund sans microparticule, la figure 1C donne la réponse cellulaire induite après injection du peptide NS3 hélicase sans microparticule, la figure 1D donne la réponse cellulaire induite après injection des microparticules de PLA sans substance protéique, et la figure lE donne la réponse cellulaire induite après injection des microparticules de l'invention PLA/NS3 hélicase. Ces graphes montrent une réponse CTL spécifique du peptide NS3 hélicase, mise en évidence lorsqu'on injecte les microparticules PLA/NS3 de l'invention. Exemple 5: Obtention d'anticorps monoclonaux avec les microparticules de l'invention PLA/p24 1. Modèle animal Les expériences d'immunisation ont été réalisées chez des souris BALB/c (H- 2d) femelles âgées de 6 à 8 semaines au moment de la première immunisation. 2. Immunogènes administrés Dans cette expérience, on a utilisé les microparticules de l'invention PLA/p24 préparées comme indiqué dans l'exemple 1, point 2, ainsi que la composition p24adjuvant de Freund (Sigma) préparée sous forme d'émulsion eau-dans-huile et dont il est connu qu'elle présente un bon pouvoir immunogène (témoin positif). 3. Immunisations Les souris ont reçu 3 doses successives de 10 g des immunogènes décrits dans le point 2 ci-dessus à 0,2 et 4 semaines. Toutes les injections ont été réalisées par voie sous-cutanée. A J68 après la première injection, les réponses humorales ont été restimulées avec une injection intraveineuse de 50 g de p24. 4. Suivi de l'apparition de la réponse humorale anti-p24 Afin de suivre l'apparition des anticorps anti-p24, on effectue régulièrement sur les souris des prélèvements de sang. La présence des anticorps anti-p24 est alors testée en utilisant le test ELISA similaire à celui décrit dans l'exemple 2, point 4. Cependant le conjugué de révélation est remplacé par un anticorps de chèvre anti-IgG de souris AffiniPure conjugué à la phosphatase alcaline (H+L, Jackson Immunoresearch, Cat no. 115-055-146). 5. Obtention d'anticorps monoclonaux Trois jours après la dernière injection, une souris du groupe PLA-p24 a été sacrifiée ; le sang et la rate ont été prélevés. Les splénocytes obtenues à partir de la rate ont été mises en culture avec les cellules de myélome Sp2/0-Agl4 pour qu'elles fusionnent et s'immortalisent, selon le protocole décrit par Kôhler et Milstein (Kôhler, G. et Milstein, C., 1975, Nature, 256:495-497 ; Kôhler, G. et Milstein, C., 1976, Eur. J. Immunol., 6 :511-519). Après une période d'incubation de 12-14 jours les surnageants des hybridomes obtenus ont été criblés pour déterminer la présence d'anticorps anti-p24 en utilisant le test ELISA décrit dans le point 4 de cet exemple. Les colonies d'hybridome positives ont été sous-clonées deux fois selon la technique de la dilution limite. 6. Résultats Le titre des anticorps anti-p24 dans le sérum des souris a été déterminé juste avant le sacrifice, individuellement pour chaque souris. Groupe PLA/p24 Souris 1 dilution 1/8000 >3,0 (saturant) dilution 1/64000 0,5 Souris 2 dilution 1/8000 >3,0 (saturant) dilution 1/64000 0,5 Souris 3 dilution 1/2000 >3,0 (saturant) dilution 1/8000 1,3 Groupe Freund/p24 Souris 1 dilution 1/8000 >3,0 (saturant) dilution 1/64000 0,5 Souris 2 dilution 1/8000 >3,0 (saturant) dilution 1/64000 0,5 Souris 3 dilution 1/2000 >3,0 (saturant) dilution 1/8000 1,4 Les titres obtenus sont comparables dans les 2 groupes. Comme des anticorps monoclonaux avaient déjà été obtenus par immunisation Freund/p24, nous avons cherché à déterminer si l'immunogène PLA/p24 qui permet d'induire des titres comparables permettrait aussi d'obtenir des anticorps monoclonaux. Pour cela, une souris du groupe PLA/p24 (souris 1) a été sacrifiée et les cellules de sa rate ont été fusionnées avec des cellules de myélome. Les hybridomes issus de la fusion ont été clonés par dilution limite dans 18 plaques 96 puits. Le criblage des surnageants de culture d'hybridome par test ELISA anti-p24 a permis d'identifier 12 clones d'hybridome qui sécrètent un anticorps spécifique de la p24. Les microparticules PLA/p24 peuvent donc être aussi utilisées pour obtenir des anticorps monoclonaux. REVENDICATIONS 1. Procédé de préparation de microparticules biorésorbables sur lesquelles sont liées des substances protéiques, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes de : (i) préparation desdites microparticules à partir d'au moins un polymère biorésorbable sans agent stabilisant et sans tensioactif, et (ii) liaison desdites substances protéiques sur les microparticules obtenues dans l'étape (i) sans agent tensioactif. 2. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce le polymère utilisé dans l'étape (i) est un poly(acide a-hydroxylé) ou un mélange de poly(acides a-hydroxylés). 3. Procédé selon l'une des revendications 1 ou 2, caractérisé en ce que la liaison des substances protéiques sur les microparticules est mise en #uvre par adsorption. 4. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisé en ce que la substance protéique est un antigène d'origine virale. 5. Procédé selon la revendication 4, caractérisé en ce que l'antigène est un antigène du virus VIH, de préférence la protéine p24 ou une protéine de régulation. 6. Procédé selon la revendication 5, caractérisé en ce que l'antigène du virus VIH est une protéine de régulation choisie parmi les protéines Tat, Rev et Nef. 7. Procédé selon la revendication 4, caractérisé en ce que l'antigène est un antigène du virus VHC, de préférence une protéine non structurale du virus VHC. 8. Procédé selon la revendication 7, caractérisé en ce que l'antigène est la protéine NS3, de préférence la protéine NS3 hélicase. 9. Microparticules biorésorbables sur lesquelles sont liées des substances protéiques, susceptibles d'être obtenues par le procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 8. 10. Utilisation des microparticules biorésorbables telles que définies dans la revendication 9, pour la préparation d'un médicament. 11. Utilisation selon la revendication 10, caractérisée en ce que le médicament est destiné à l'inhibition, la prévention ou le traitement d'une infection provoquée par un virus. 12. Composition pharmaceutique, notamment vaccin, caractérisée en ce qu'elle contient au moins une microparticule biorésorbable telle que définie dans la revendication 9, et le cas échéant un excipient pharmaceutiquement acceptable. 13. Anticorps dirigés contre les microparticules biorésorbables telles que définies dans la revendication 9. 14. Composition diagnostique constituée des microparticules biorésorbables telles que définies dans la revendication 9 ou des anticorps tels que définis dans la revendication 13. 15. Utilisation de la composition diagnostique telle que définie dans la revendication 14 pour le diagnostic in vitro de l'état pathologique lié à la substance protéique liée à la microparticule biorésorbable. 16. Utilisation selon la revendication 15, caractérisée en ce que l'état pathologique est une infection virale.