Brevet FR2852242A1 — publié le 20040917

UTILISATION D'OLIGOGALACTURONIDES EN COSMETIQUE OU POUR LA PREPARATION D'UNE COMPOSITION DERMATOLOGIQUE OU PHARMACEUTIQUE. La présente invention concerne l'utilisation d'un mélange d'oligogalacturonides en cosmétique ou pour la préparation d'une composition dermatologique comme agents de limitation de la propagation de la réponse inflammatoire, notamment pour les peaux sensibles. Des oligogalacturonides peuvent être obtenus par hydrolyse de la pectine. La pectine est constituée d'une chaîne principale appelée acide pectique, constituée d'un enchaînement de sucres du type acide galacturonique. Les sucres constitutifs peuvent être méthylés ou estérifiés, la proportion des sucres transformés étant caractéristique d'une espèce végétale donnée. La chaîne principale est parfois interrompue par l'insertion d'une chaîne latérale de sucres neutre type rhamnose ou glucose. Par hydrolyse de la pectine, il est possible d'obtenir un mélange d'oligogalacturonides de taille définie et de degré de polymérisation connu, selon les conditions de la réaction. L'abrégé du brevet japonais JP 09 048732 publié dans le patent abstracts of Japan vol 1997 n 6 décrit les oligogalacturonides comme piège à radicaux libres et préconise leur utilisation en cosmétique dans une application anti-âge. La demande de brevet internationale W0002/42484 décrit un procédé de fabrication de produits d'hydrolyse de pectine destine à empêcher l'adhésion de germes pathogènes sur des cellules eucaryotes ou des interactions cellules-cellules. L'article intitulé modified citrus pectin , Journal of the national cancer institute, vol 87,n 5,1995 décrit l'utilisation de fragments de pectine de poids moléculaires élevés en tant qu'anticancéreux. Dans le cadre des travaux qui ont conduit à la présente invention, la Demanderesse a mis en évidence l'action des oligogalacturonides sur les phénomènes inflammatoires et sur la propagation de l'inflammation, notamment au niveau du derme. Il existe dans l'épiderme des terminaisons nerveuses sensitives dont le rôle est de capter en permanence les différents stimuli internes et/ou externes. En cas d'agressions, qu'elles soient environnementales ou psychiques, ces terminaisons libèrent de façon anarchique des signaux biologiques, les neuromédiateurs qui vont déclencher, après fixation sur des récepteurs cutanés spécifiques, la sécrétion de molécules "message" ou cytokines. Ces cytokines sécrétées par différents types cellulaires vont déclencher le recrutement des leucocytes activés et provoquer la libération d'autres cytokines. Tout ceci va aboutir à un phénomène d'amplification de la réponse inflammatoire et déclencher des réactions à la surface de la peau, et notamment des rougeurs et des démangeaisons. Le facteur incontournable et déclenchant de cette réponse inflammatoire et de son amplification est la cellule endothéliale. Le derme cutané est un tissu conjonctif richement vascularisé. En effet, le derme profond contient un réseau de micro vaisseaux sanguins dont le rôle est entre autres d'alimenter la peau en substances nutritives. La paroi de ces vaisseaux sanguins est constituée d'un enchaînement de cellules endothéliales, cellules polarisées qui forment l'endothélium ou paroi vasculaire, frontière entre la lumière du vaisseau et la matrice conjonctive qu'est le derme. Les cytokines libérées en cas d'agression, de quelque nature qu'elle soit, provoquent l'expression de molécules d'adhésion qui vont permettre la reconnaissance et le recrutement, sur les cellules endothéliales, de cellules sanguines, ci-après dénommées cellules de l'inflammation et notamment de leucocytes activés. Il se produit alors une extravasion de ces cellules sanguines entre les cellules endothéliales, à travers la paroi vasculaire. Ces cellules de l'inflammation après avoir traversé la paroi endothéliale (diapédèse) migrent et remontent vers la surface de l'épiderme au site de l'inflammation en induisant des réactions en cascade qui s'amplifient. Un élément important de ce processus est la reconnaissance de ces cellules de l'inflammation par la cellule endothéliale via ces molécules d'adhésion qui va déclencher la diapédèse et une amplification du phénomène inf lammatoire . Les inventeurs ont donc cherché à examiner si les oligogalacturonides avaient une action sur l'inflammation, et notamment sur les inflammations auxquelles sont régulièrement sujettes les peaux sensibles, et ils ont alors mis en évidence le mécanisme d'action des oligogalacturonides sur le phénomène de l'inflammation. Les inventeurs ont en effet constaté que les oligogalacturonides avaient une action sur les cellules de l'inflammation et empêchaient ou limitaient la reconnaissance de cellules circulantes comme des lymphocytes par des cellules endothéliales. La présente invention a donc pour objet l'utilisation d'oligogalacturonides en tant qu'agent limitant la propagation de la réponse inflammatoire, pour la préparation d'une composition cosmétique, dermatologique ou pharmaceutique. Les oligogalacturonides ont pour action de diminuer l'expression des facteurs d'adhésion cellulaires sur les cellules endothéliales du derme. Ils limitent la reconnaissance par des cellules endothéliales, des cellules circulantes responsables de la propagation de l'inflammation, et limitent la diapédèse. Conformément à l'invention, les oligogalacturonides sont utilisés pour la préparation d'une composition cosmétique, dermatologique ou pharmaceutique utile pour prévenir ou traiter les inflammations plus particulièrement de la peau. Ces inflammations résultent de la propagation de la réponse inflammatoire au niveau de la peau. Suivant un mode de réalisation particulier de l'invention, les oligogalacturonides sont utilisés pour diminuer l'expression des facteurs d'adhésion cellulaires sur les cellules endothéliales du derme de façon à diminuer la propagation de la réponse inflammatoire au niveau de la peau. 4) Utilisation selon l'une des revendications 1 ou 2, caractérisée en ce que les oligogalacturonides limitent la reconnaissance, par les cellules endothéliales, des cellules circulantes responsables de la propagation de l'inflammation façon à diminuer la propagation de la réponse inflammatoire au niveau de la peau. Suivant un autre mode de réalisation de l'invention, les oligogalacturonides sont utilisés pour limiter la diapédèse de façon à diminuer la propagation de la réponse inflammatoire au niveau de la peau. L'invention a donc également pour objet l'utilisation des oligogalacturonides pour la préparation d'une composition dermatologique destinée à traiter les inflammations dermatologiques. L'invention a également pour objet l'utilisation des oligogalacturonides pour la préparation d'une composition cosmétique particulièrement destinée aux peaux sensibles. Avantageusement, qu'elle soit à visée dermatologique ou à visée cosmétique, la composition contenant les oligogalacturonides est appliquée topiquement. De préférence, la composition selon l'invention est sous forme d'une émulsion permettant la pénétration des oligogalacturonides dans le derme. De préférence, une telle composition comprend, en équivalent poids sec par rapport au poids total de la composition, de 0,01 à 5 %, de préférence 0,5 % d'oligogalacturonides. L'invention a encore pour objet une méthode de soin cosmétique des peaux sensibles limitant la propagation de la réponse inf lammatoire, caractérisée en ce qu'elle comprend l'application sur la peau d'une quantité adéquate oligogalacturonides. Suivant un mode de réalisation préféré de l'invention, les oligogalacturonides sont obtenus par hydrolyse enzymatique d'une pectine. La pectine utilisée est de haute qualité, et de préférence n'a pas été standardisée suivant les modes de fabrication alimentaires, à savoir notamment traitée par l'addition de sucres permettant une homogénéisation des viscosités entre les lots. Avantageusement, le degré de méthylation et d'estérification de cette pectine est faible afin d'être le plus proche possible de l'acide polygalacturonique. Avantageusement, l'hydrolyse est réalisée par un cocktail enzymatique comprenant des pectinases ayant principalement des activités polygalacturonase, méthylestérase, et polygalacturonase lyase. De préférence, les enzymes utilisées pour hydrolyser la pectine sont de préférence des enzymes de type industriel fréquemment utilisées dans l'industrie de fabrication des jus de fruits. Ces cocktails sont conçus pour couper les pectines membranaires et ainsi permettre une meilleure extraction des jus de fruits par la fragilisation des structures avant pressage. Elles permettent également de clarifier les jus dans lesquels un trouble n'est pas souhaitable (souvent lié aux pectines). De préférence, les oligogalacturonides présentent un degré de polymérisation compris entre 1 et 5. De manière particulièrement avantageuse, les oligogalacturonides sont obtenus par le procédé comprenant les étapes suivantes : - l'hydrolyse d'une solution de pectine de concentration comprise entre 0,1 à 10 % et de préférence 1 %, et de pH de l'ordre de 4,5, par addition à ladite solution de pectine d'une solution d'enzyme comprenant de 10 à 1000 et de préférence 100 unités polygalacturonase, pour obtenir dans la solution finale de 1 à 10 et de préférence 4 unités pectinase, - l'arrêt de l'hydrolyse - la séparation des polymères de haut poids moléculaire et la récupération des oligogalacturonides. Suivant un mode de réalisation particulier de l'invention, les oligogalacturonides utilisés conformément à l'invention sont obtenus par le procédé qui suit : on met en solution de 0,1 à 10 % de pectine et de préférence 1% de pectine type HERBSTREITH et FOX Classic AU 910 issue de pomme (pectine type HB AU). Le pH est ajusté à 4,5 de préférence avec une solution d'acide acétique. On prépare une solution enzymatique correspondant à 10 à 1000, et de préférence 100, unités polygalacturonase. On utilise par exemple une solution enzymatique provenant de la société LYVEN Clarification granulé. La solution enzymatique est ajoutée dans la solution de pectine afin d'obtenir en final de 1 à 10 unités pectinase. L'hydrolyse est effectuée à 50 C pendant 2 heures puis stoppée par chauffage à 70 C pendant 1 heure ou à 100 C pendant 5 minutes. Après refroidissement, les polymères de haut poids moléculaire sont précipités par ajout de HC1 1N puis éliminés par centrifugation, de préférence à 5000 g pendant 30 min, ou par filtration. Le pH du surnageant est réajusté en final à une valeur comprise entre 6 et 8. Les oligogalacturonides formés sont analysés par HPLC, suivant une technique mise au point par les inventeurs, et qui permet d'obtenir le profil chromatographique des oligogalacturonides formés. Colonne :TSK gel DEAE 5-PW (TOSOHAAS) Eluant : CH3COONH4 1M / H20 en gradient d'élution Débit phase mobile: lml/min Détecteur évaporatif à diffusion de la lumière (DEDL; ALTECH). Température du four : 130 C Débit d'azote : 4,OSLPM(standard liter per min) (conditions standards pour H20 en tant que solvant). Choix du gradient: temps en min %A %B (CH3COONH4 1M) (H20) 0 10 90 1 30 70 3 30 70 30 50 50 45 50 50 On observe une répartition des oligomères de taille (degré de polymérisation) de 1 à 5. L'absence de standard ne permet pas de doser les oligomères de degré de polymérisation de 4 et 5 mais il est possible de doser les oligomères les plus courts. Si on procède dans les conditions décrites à l'hydrolyse d'une solution de pectine de concentration 10 g/1 ; la concentration totale en acide mono, di et trigalacturonique est d'environ 4,5 g/1 en final ; donc environ 45 % en poids de la pectine mise en solution. Les oligogalacturonides formés sont avantageusement atomisés ou lyophilisés en final afin de permettre une meilleure conservation et des manipulations plus aisées. Les expérimentations qui suivent montrent les effets des oligogalacturonides sur l'expression des molécules d'adhésion d'ICAM-1 et sur les fibres d'actine, en condition de stress ou non d'une part, puis les effets des oligogalacturonides sur l'adhésion des lymphocytes aux cellules endothéliales en conditions de stress ou pas d'autre part : la figure 1 montre des cellules endothéliales HMVEC non stimulées, la figure 1A montre le cytosquelette, et la figure 1B est une coupe de plusieurs cellules, permettant notamment de visualiser la surface de la cellule ; la figure 2 montre des cellules endothéliales HMVEC stimulées par du TNF (lng/ml), la figure 2A montre le cytosquelette, et la figure 2B est une coupe de plusieurs cellules ; la figure 3 montre des cellules endothéliales HMVEC stimulées par du H202 (100 M), la figure 3A montre le cytosquelette, et la figure 3B est une coupe de plusieurs cellules ; la figure 4 est une photo du cytosquelette de cellules endothéliales HMVEC traitées par des oligogalacturonides(0,001 mg/ml), la figure 4A montre le cytosquelette, et la figure 4B est une coupe de plusieurs cellules ; la figure 5 est une photo du cytosquelette de cellules endothéliales HMVEC traitées par des oligogalacturonides(O,OOlmg/ml) et stimulées par du TNF (lng/ml), la figure 5A montre le cytosquelette, et la figure 5B est une coupe de plusieurs cellules ; - la figure 6 est une photo du cytosquelette de cellules endothéliales HMVEC traitées par des oligogalacturonides (0,001mg/ml) et stimulées par du H202 (100 M), la figure 6A montre le cytosquelette, et la figure 6B est une coupe de plusieurs cellules ; la figure 7A est un histogramme comparatif concernant l'adhésion des lymphocytes sur les cellules endothéliales HskMEC.ST avec et sans condition de stress oxydant, en présence et en absence d'oligogalacturonides ; la figure 7B est un histogramme comparatif concernant l'adhésion des lymphocytes sur les cellules endothéliales HskMEC.l avec et sans condition de stress oxydant, en présence et en absence d'oligogalacturonides ; - la figure 8 est un histogramme comparatif concernant l'adhésion des lymphocytes sur les cellules endothéliales HskMEC. ST en condition de flux avec et sans condition de stress oxydant, en présence et en absence d'oligogalacturonides. Ces figures mettent en évidence de l'expression des fibres d'actine et des molécules d'adhésion ICAM-1 : Observation du cytosquelette et de l'expression d'ICAM-1 par microscopie optique des échantillons marqués par immunofluorescence. La figure 1B montre la cellule, dans un état normal, et la figure 1A présente un réseau de base de fibres d'actine, protéines constitutives du cytosquelette. En réponse à un stress, les cellules endothéliales vont développer ces fibres qui vont apparaître plus nombreuses, plus denses, plus longues avec une organisation accrue. Sur les figures 2 et 3, la présence de ICAM-1, marqueur de reconnaissance à la surface des cellules endothéliales est représentée sur les figures 2A et 2B, les figures 2A et 3A représentent le cytosquelette des cellules endothéliales (fibres de stress d'actine). On peut remarquer que lorsque l'on stresse les cellules soit par TNF # (figure 2), soit par H2O2 (figure 3), l'expression des fibres de stress et de ICAM-1 à la surface des cellules est nettement accentuée, par rapport aux cellules non stimulées de la figure 1. Sur la figure 4, après traitement par les oligogalacturonides, on constate que l'expression des fibres de stress et de ICAM-1 à la surface des cellules est fortement diminuée. La figure 5 montre des cellules HMVEC qui ont été cultivées sur des lamelles en verre dans des puits de culture puis traitées par les oligogalacturonides à 0,001 mg/ml pendant 5 heures à 37 C. Les surnageants de culture ont été ensuite éliminés, les cellules ont été lavées au PBS (sans Ca2+, sans Mg2+), puis traitées par les oligogalacturonides avec ou sans TNF# (lng/ml). Les cellules sont incubées à 37 C pendant 16 heures puis ces puits ont été traités par lml/puit d'oligogalacturonides à O,OOlmg/ml. L'incubation est faite pendant 15 heures à 37 C. Les puits sont lavés 2 fois au PBS, les cellules sont fixées à la paraformaldéhyde 3 %. Les sites de fixation non spécifiques des anticorps sont ensuite saturés par du chlorure d'ammonium à 50 mM, puis les cellules sont perméabilisées par la saponine 0,01 %. Les lamelles avec les cellules fixées sont ensuite mises en contact avec l'anticorps primaire : anti ICAM-1 couplé FITC (Diaclone) et la rhodamine (Sigma, P1951 Phalloidin TRITC labeled), pendant 1 heure 30 puis lavées 2 fois au PBS. Les lamelles sont ensuite incluses en glycérol sur des lames, puis observées en microscopie optique ou confocale. On observe le cytosquelette et l'expression des molécules d'adhésion ICAM-1. La présence de ICAM-1, marqueur de reconnaissance à la surface des cellules endothéliales est représentée sur la figure 5B, la figure 5A représente le cytosquelette des cellules endothéliales (fibres de stress d'actine). Lorsque les cellules sont traitées par les oligogalacturonides après stimulation par TNF#, l'expression des fibres de stress et de ICAM-1 est fortement diminuée par rapport à la situation de la figure 2, qui montre des cellules non traitées par des oligogalacturonides. Les photos des figures 6A et 6B ont été prise après avoir suivi le protocole suivant : Les cellules HMVEC sont cultivées sur lamelles en verre dans des puits de culture puis traités par les oligogalacturonides à 0,001 mg/ml pendant 5 heures à 37 C. Les surnageants de culture sont ensuite éliminés, les cellules sont lavées au PBS (sans Ca2+, sans Mg2+), puis traitées par les oligogalacturonides ou avec ou sans H2O2 (100 m). Les cellules sont incubées à 37 C pendant 1 heure. Un lavage des puits H2O2 est fait au PBS (sans Ca2+, sans Mg2+), puis ces puits sont traités par lml/puit d'oligogalacturonides à 0,001mg/ml. L'incubation est faite pendant 15 heures à 37 C. Les puits sont lavés 2 fois au PBS, les cellules sont fixées à la para-formaldéhyde 3 %. Les sites de fixation non spécifiques des anticorps sont ensuite saturés par du chlorure d'ammonium à 50 mM, puis les cellules sont perméabilisées par la saponine 0,01 %. Les lamelles avec les cellules fixées sont ensuite mises en contact avec l'anticorps primaire : anti ICAM- 1 couplé FITC (Diaclone) et la rhodamine (Sigma, P1951 Phalloidin TRITC labeled), pendant 1 heure 30 puis lavées 2 fois au PBS. Les lamelles sont ensuite incluses en glycérol sur des lames, puis observées en microscopie optique ou confocale. On observe le cytosquelette et l'expression des molécules d'adhésion ICAM-1. La présence de ICAM-1, marqueur de reconnaissance à la surface des cellules endothéliales est représentée sur la figure 6B, la figure 6A représente le cytosquelette des cellules endothéliales (fibres de stress d'actine). Lorsque les cellules sont traitées par les oligogalacturonides après stimulation par H2O2, l'expression des fibres de stress et de ICAM-1 est fortement diminuée par rapport à la situation de la figure 2, qui montre des cellules non traitées par des oligogalacturonides. En conclusion, lorsque les cellules sont traitées par les oligogalacturonides après stimulation soit par TNF # (figure 5) soit par H2O2 (figure 6), l'expression du cytosquelette et de ICAM-1 est fortement diminuée à la surface des cellules. Cette observation est valable aussi en absence de stress (figure 4). Quelque soit le passage des cellules, les résultats sont identiques. Les figures 1 à 6 montrent que l'expression de ICAM-1, une molécule d'adhésion induite à la surface des cellules endothéliales sous l'action des cytokines est diminuée sous l'action des oligogalacturonides. Du fait de cette diminution, le recrutement des cellules circulantes sera moins efficace. Les oligogalacturonides sont donc inhibiteurs de la reconnaissance des cellules de l'inflammation par les cellules endothéliales. Les facteurs déclenchant la réaction inflammatoire sont mimés in vitro par un stress oxydant représenté par TNF # ou H202. L'effet des oligogalacturonides est évalué en conditions de stress ( stimulation par le TNF # ou H202) ou non. Dans les figures 7A, 7B et 8, les 2 types cellulaires (cellules circulantes et cellules endothéliales) sont mises en contact et on regarde l'adhésion relative entre ces 2 types cellulaires en absence et en présence d'oligogalacturonides. L'effet est évalué en conditions de stress (stimulation par H202) ou non. Les figures 7A et 7B mettent en évidence de l'adhésion des cellules circulantes : études d'adhérence quantitative et rhéologiques (in vitro) sont réalisées sur des cellules endothéliales organospécifiques primaires et immortalisées dans un modèle de sénescence cellulaire. Les cellules HSkMEC.l et HSkMEC.ST, cellules endothéliales de peau, représentent deux types d'immortalisation. Les cellules sont cultivées dans l'OptiMEM (Gibco BRL, Life Technologies SARL, Cergy Pontoise, France) supplémenté en SBF (5%, v/v, Dutscher, Brumath, France) et antibiotiques. Le passage des cellules se fait par traitement à la trypsine 0,25% (Gibco BRL), 0,05% EDTA (w/v) en solution dans le tampon phosphate (PBS). Pour les études en cytofluorimétrie, les cellules sont détachées des flacons de culture par la collagénase type 1 (lmg/ml)/BSA (lOmg/ml). Les expériences d'adhérence sont faites selon Bizouarne et al., 1993. Des cellules endothéliales marquées par le fluorochrome PKH-26 GL (Horan and Slezak, 1989) (Sigma) sont mises en culture 24 heures avant en linbro 24 puits (Falcon) (0,75x105 cells dans 400jul). CEMT4 ou HL-60 cells, marquées par la FTC (Denis et al., 1996) sont incubées avec les cellules endothéliales dans un rapport de 5 cellules par cellules endothéliales pendant 30 minutes à température ambiante. En conditions de stress oxydant, les oligogalacturonides (lOOjug/ml) sont ajoutés lors de la post incubation de H2O2 (100 mol) (1 heure puis 16 heures). Les résultats sont exprimés comme index d'adhérence relative (RAI) (Butcher et al., 1980), directement lié à l'effet positif ou négatif d'une molécule par rapport aux conditions du témoin. Les cellules marquées sont analysées par cytométrie en flux à l'aide d'un FACS 440, ou un FACSort (Becton Dickinson, Sunnyvale, CA, USA) Les oligogalacturonides provoquent une baisse de l'adhésion avant et après activation par H2O2, sans que nous puissions établir une différence entre ces deux types cellulaires, c'est pourquoi il est important de se placer en conditions de flux. HSkMEC.l Avec HSkMEC.ST Avec H2O2 H2O2 Témoin 6 12 8 15 Oligo La figure 8 montre les résultats après utilisation de la cytométrie de flux. Cette technique permet de simuler les forces de cisaillement in vitro. Une chambre de perfusion connectée par un système de tuyaux à une pompe aspire un échantillon de tampon contenu dans un réservoir. Une lamelle couverte par une monocouche de cellules endothéliales est montée dans l'ouverture centrale de la chambre de perfusion perpendiculairement au flux. La force de cisaillement désirée est obtenue par régulation du débit sanguin selon le diamètre du canal de la chambre de perfusion. Après la perfusion dans un bain thermostaté à 37 C, le flux est arrêté et la lame sortie de la chambre. La lame est ensuite lavée, fixée, colorée et prête à être évaluée par un système d'analyse d'image. Les cellules en suspension passent pendant 3 minutes puis le flux est stoppé et le milieu seul est passé dans les mêmes conditions, avec ou sans molécules modulatrices (10 minutes, 100pl/min), milieu seul (10 minutes, lml/min). Les cellules marquées sont analysées par cytométrie en flux à l'aide d'un FACS 440, ou un FACSort (Becton Dickinson, Sunnyvale, CA, USA) et quantifiées selon Paprocka et al. (2002). Cinq mille événements, sélectionnés en taille structure sont enregistrés et analysés par les logiciels PC Lysis ou CellQuest (Becton Dickinson). La fluorescence moyenne des contrôles placée à une valeur inférieure à 10, est utilisée comme seuil pour estimer les cellules positives. Les histogrammes présentés sont un représentant de cinq expériences séparées. Les résultats diffèrent des résultats obtenus en conditions d'adhésion statiques. Cependant, l'inhibition est plus nette après action de H202. Les oligogalacturonides sont très inhibiteurs pour l'adhésion. HSkMEC.ST Avec H202 Témoin 10 18 oligo 7 La différence entre les cellules HSkMEC.l et les cellules HSkMEC.ST (qui représentent deux types d'immortalisation), viendrait du fait que HSkMEC.ST pourraient représenter des cellules ''jeunes'' par rapport aux cellules HSkMEC.l qui représenteraient des cellules plus proches de la sénescence. Les oligogalacturonides ont donc pour effet d'une part de diminuer de l'expression des fibres d'actine, et d'autre part de diminuer l'expression des molécules d'adhésion. Ils exercent donc un effet antistress et cytoprotecteur. REVENDICATIONS 1) Utilisation d'oligogalacturonides pour la préparation d'une composition cosmétique, dermatologique ou pharmaceutique utile pour prévenir ou traiter les inflammations plus particulièrement de la peau. 2) Utilisation selon la revendication 1, caractérisée en ce que lesdites inflammations résultent de la propagation de la réponse inflammatoire au niveau de la peau. 3) Utilisation selon l'une des revendications 1 ou 2, caractérisée en ce que les oligogalacturonides diminuent l'expression des facteurs d'adhésion cellulaires sur les cellules endothéliales du derme de façon à diminuer la propagation de la réponse inflammatoire au niveau de la peau. 4) Utilisation selon l'une des revendications 1 ou 2, caractérisée en ce que les oligogalacturonides limitent la reconnaissance, par les cellules endothéliales, des cellules circulantes responsables de la propagation de l'inflammation façon à diminuer la propagation de la réponse inflammatoire au niveau de la peau. 5) Utilisation d'oligogalacturonides selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisée en ce que les oligogalacturonides limitent la diapédèse de façon à diminuer la propagation de la réponse inflammatoire au niveau de la peau. 6) Utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 5, caractérisée en ce que ladite composition est une émulsion permettant la pénétration desdits oligogalacturonides dans le derme. 7) Utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 6, caractérisée en ce qu'elle comprend, en équivalent poids sec par rapport au poids total de la composition, de 0,01 à 5 %, de préférence 0,5 % d'oligogalacturonides. 8) Utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 7, caractérisée en ce qu'elle lesdits oligogalacturonides sont obtenus par hydrolyse enzymatique d'une pectine. 9) Utilisation selon la revendication 8, caractérisée en ce que ladite hydrolyse est réalisée par un cocktail enzymatique comprenant des pectinases ayant principalement des activités polygalacturonases, méthylestérase, et polygalacturonase lyase. 10) Utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 9, caractérisée en ce que lesdits oligogalacturonides présentent un degré de polymérisation compris entre 1 et 5. 11) Utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 10, caractérisée en ce que lesdits oligogalacturonides sont obtenus par le procédé comprenant les étapes suivantes : - l'hydrolyse d'une solution de pectine de concentration comprise entre 0,1 à 10 % et de préférence 1 %, et de pH de l'ordre de 4,5, par addition à ladite solution de pectine d'une solution d'enzyme comprenant de 10 à 1000 et de préférence 100 unités polygalacturonase, pour obtenir dans la solution finale de 1 à 10 et de préférence 4 unités pectinase, - l'arrêt de l'hydrolyse - la séparation des polymères de haut poids moléculaire et la récupération des oligogalacturonides. 12) Utilisation selon la revendication 11, caractérisée en ce que les oligogalacturonides formés sont atomisés ou lyophilisés. 13) Méthode de soin cosmétique des peaux sensibles limitant la propagation de la réponse inflammatoire, caractérisée en ce qu'elle comprend l'application sur la peau d'une quantité adéquate d'oligogalacturonides.