Brevet FR2854078A1 — publié le 20041029

PROCEDE DE FABRICATION D'UNE COMPOSITION THERAPEUTIQUE IMMUNO-STIMULANTE. L'invention concerne un procédé de fabrication d'une composition thérapeutique, stimulant la réponse immunitaire innée par induction et/ou amplification de l'expression des récepteurs mannose des macrophages. L'invention s'inscrit avantageusement dans le cadre des traitements préventifs et/ou curatifs de maladies infectieuses d'origine bactérienne, virale, fongique, protozoaire... et présente un intérêt tout particulier, dans la médication des sujets immunodéprimés. La réponse immunitaire innée, essentielle dans les mécanismes de défense de l'organisme contre les agents infectieux, est une réaction immune précoce qui se déclenche dès les premiers instants de l'infection. Les macrophages participent à cette réponse immunitaire innée en reconnaissant, en phagocytant et en détruisant l'agent infectieux. La phase de reconnaissance consiste en l'identification de structures biochimiques superficielles caractéristiques des pathogènes et fait intervenir nombre de récepteurs à la surface des macrophages. Parmi ces récepteurs, le récepteur mannose (on parle aussi de récepteur pour le mannose) permet la reconnaissance, mais également la fixation et la phagocytose, d'une grande diversité de pathogènes présentant sur la face extérieure de leurs parois des glycoprotéines, des polysaccharides et/ou des lipopolysaccharides ayant à leurs extrémités libres des motifs mannosylés, fucosylés ou des résidus de Nacétylglucosamine. En plus de son rôle dans la phagocytose, le récepteur mannose joue un rôle primordial dans le déclenchement des fonctions effectrices des macrophages comme la synthèse de cytokines (IL-1(3, IL-6, GMCSF), la production des intermédiaires réactifs de l'oxygène, ainsi que dans la présentation de l'antigène. L'implication du récepteur mannose des macrophages (MMR) est ainsi essentielle dans les processus de défense de l'organisme. Elle n'est toutefois effective que si ce récepteur est fortement exprimé à la surface des macrophages. Pour certains sujets immunodéprimés comme les sidéens ou les patients traités par chimiothérapie ou par des immuno-suppresseurs (par exemple, après une transplantation), l'induction et/ou l'amplification de l'expression de ce récepteur permettrai(en)t de pallier efficacement l'insuffisance de leur système immunitaire, en améliorant non seulement la vigilance de leur système immunitaire vis-à-vis de nombreux micro-organismes infectieux, mais également en stimulant et en amplifiant les fonctions effectrices des macrophages en vue d'obtenir une réponse immune efficace. Par ailleurs, face à l'émergence des bactéries résistantes aux antibiotiques, l'induction et/ou l'amplification de l'expression du MMR offre(nt) une alternative avantageuse à l'emploi des antibiotiques à large spectre. Cependant, bien que le rôle du récepteur mannose des macrophages soit aujourd'hui bien défini, les voies de régulation de l'expression de ce récepteur restent encore mal connues. Dans tout le texte, on entend par "milieu biologique", un milieu de composition biologique, c'est-à-dire comprenant de la matière vivante, notamment des organismes monocellulaires, pluricellulaires et/ou viraux. Un milieu biologique peut être artificiel (par exemple, un milieu de culture), ou naturel (par exemple, un tissu vivant, une composition sanguine, isolés ou non d'un organisme pluricellulaire-notamment un primate-). Par ailleurs, on désigne par "macrophage", toute cellule, de localisation essentiellement tissulaire, issue de la différenciation des monocytes (les macrophages en tant que tels, les cellules dendritiques, les cellules neutrophiles phagocytaires) ainsi que les monocytes. "Macrophage" au sens de l'invention désigne ainsi, de manière générale, toute cellule susceptible d'exprimer le MMR et ayant la capacité à phagocyter. L'invention a pour objectif de proposer des composés capables d'induire et/ou d'amplifier l'expression des MMR. Elle vise ainsi à proposer des composés capables de stimuler la capacité des macrophages à inhiber la prolifération, voire à éliminer, de nombreux micro-organismes via leurs récepteurs mannose et d'améliorer l'efficacité de leurs fonctions effectrices -notamment production d'agents oxydants et présentation de l'antigène-. L'invention vise également à proposer des utilisations de ces composés pour le traitement thérapeutique de maladies infectieuses, en particulier dans le cadre de la médication de sujets immunodéprimés en vue de pallier à l'insuffisance de leur système immunitaire. L'invention concerne donc un procédé de traitement extracorporel d'un milieu biologique comprenant des macrophages, caractérisé en ce qu'on introduit, dans ledit milieu biologique, une quantité efficace d'au moins un ligand agoniste de PPARy, adaptée pour induire et/ou on amplifier l'expression des récepteurs mannose des macrophages. Les PPARs (récepteurs des proliférateurs de peroxisomes) sont des facteurs de transcription appartenant à la super-famille des récepteurs nucléaires aux hormones et dont l'activation se réalise par la fixation d'un ligand. Trois isoformes de PPARs sont actuellement connus : PPARa PPARss/# et PPARy. Bien qu'ils aient de fortes homologies de séquence, chaque isoforme présente des distributions tissulaires et des spécificités fonctionnelles particulières. PPARy a été initialement décrit comme étant impliqué dans des phénomènes d'adipogénèse, de sensibilisation à l'insuline et de différenciation cellulaire. Au niveau des cellules adipeuses, l'activation de PPARy conduit au stockage des graisses, à la différenciation des cellules et à l'amplification de l'expression des gènes impliqués dans la lipogénèse. Par la suite, d'autres travaux ont permis de mettre en évidence les propriétés antiinflammatoires de PPARy et son rôle dans la régulation de certaines réactions inflammatoires. Les inventeurs, quant à eux, ont montré, grâce à des ligands spécifiques de PPARy, que l'activation de ce récepteur nucléaire particulier conduisait également à une induction génique et une expression protéique du MMR, aboutissant à la stimulation des propriétés anti-infectieuses des macrophages vis-à-vis de nombreux pathogènes ayant sur la face extérieure de leurs parois des motifs mannosylés ou fucosylés. Tel est le cas de nombreuses bactéries (Streptococcus pneumoniae, Klebellia pneumoniae, Cryptococcus neoformans), mycobactéries (Mycobacterium tuberculis), champignons (Candida albicans) et parasites protozoaires (Leishmania donovani, Pneumocystis carinii, Trypanosoma cruzi). Par le même principe, l'activation de PPARy devrait permettre de stimuler les propriétés antiinfectieuses des macrophages vis-à-vis de nombreux pathogènes présentant, sur la face extérieure de leurs parois, des résidus de N-acétylglucosamine. Tel est le cas des virus Influenza et HIV-1(virus de l'immunodéfiscience humaine 1). Avantageusement, au moins un des ligands agonistes de PPARy utilisés pour le traitement des macrophages en vue d'induire et/ou d'amplifier l'expression des MMR selon l'invention, est choisi parmi le groupe des ligands naturels : la 15d-PGJ2, les prostaglandines Al et D2, les acides 9- et 13-hydoxyoctadécanoïques, les dérivés des LDL (lipoprotéines de faible densité) oxydées. Parmi ces ligands naturels, la 15d-PGJ2 (15-déoxy-#12, Il~ prostaglandine J2), un métabolite de la prostaglandine D2 (PGD2), est connue comme étant un des plus puissants ligands agonistes de PPARy. On peut également et avantageusement choisir au moins un des ligands agonistes de PPARy parmi le groupe des ligands synthétiques : la troglitozone (Resulin), la rosiglitazone (Avandia), la pioglitazone (Actos), la ciglitazone, l'englitazone, le GW 347845, le KRP-297, le JTT-501B, le SB 213068, le GI 262570, le GW 1929, le GW 7845, le GW 0207, le L-796449, l'indométhacine, l'ibuprofène. La troglitazone, la rosiglitazone, la proglitazone, la ciglitazone, l'englitazone, le GW 347845 appartiennent à la famille des thiazolidinediones et sont couramment utilisés dans le domaine médical comme médicaments hypolipidémiants pour le traitement de certains diabètes. De même, l'indométhacine et l'ibuprofène sont communément utilisés comme antiinflammatoires non-stéroïdiens pour le traitement de certaines maladies inflammatoires, comme l'athérosclérose et l'arthrose. L'invention propose d'utiliser ces composés et, de manière générale, tout ligand agoniste de PPARy pour des applications autres que la régulation des mécanismes adipocytaires et/ou inflammatoires. Le lien fonctionnel existant entre le facteur de transcription PPARy et l'expression du MMR, récemment mis en évidence par les inventeurs, offre ainsi de nouvelles perspectives d'application aux ligands agonistes de PPARy. En particulier, la capacité de ceux-ci à induire et à amplifier l'expression du récepteur mannose peut avantageusement être mise en #uvre pour inhiber la prolifération, voire pour éliminer, des micro-organismes ayant sur la face extérieure de leurs parois des motifs susceptibles de former avec les récepteurs mannose des macrophages des liaisons réciproques de type ligand-récepteur. En effet, les inventeurs ont pu déterminer, grâce à des expérimentations utilisant C. albicans comme modèle de micro-organisme sensible au MMR, qu'au-delà d'une simple modulation de l'expression du MMR, le traitement des macrophages par un ligand agoniste de PPARy conduisait à une stimulation notable de la capacité des macrophages à éliminer une grande variété de micro-organismes, non seulement par phagocytose, mais également par une production accrue d'agents oxydants. L'invention concerne donc également un procédé d'inhibition, notamment extra-corporelle, de la prolifération de microorganismes présentant sur la face extérieure de leurs parois des motifs susceptibles de former avec les récepteurs mannose des macrophages des liaisons réciproques de type ligand-récepteur, caractérisé en ce qu'on place dans un milieu infecté par lesdits micro-organismes et au contact des macrophages, une quantité efficace d'au moins un ligand agoniste du récepteur nucléaire PPARy. Selon l'invention, lesdits macrophages peuvent être initialement présents dans le milieu infecté ou introduits ultérieurement. Avantageusement et selon l'invention, lesdits microorganismes infectieux présentent sur la face extérieure de leurs parois des polysaccharides et/ou des lipopolysaccharides ayant à leurs extrémités libres des motifs mannosylés ou fucosylés. Il s'agit, en particulier, de bactéries (aussi bien Gram-positives que Gram-négatives) telles que Streptococcus pneumoniae, Klebsellia pneumoniae et Cryptoccocus neoformans, de mycobactéries telles que Mycobacterium tuberculosis, de champignons tels que Candida albicans, ou encore de protozoaires tels que Leishmania donovani, Pneumocystis carinii et Trypanosoma cruzi. Avantageusement, un procédé selon l'invention peut également permettre une inhibition, notamment extra-corporelle, de la prolifération de micro-organismes présentant sur leurs la face extérieure de parois des glycoprotéines ayant une extrémité N-acétylglucosamine. Tel est le cas du virus Influenza et de HIV-1. Avantageusement, au moins un des ligands agonistes de PPARy utilisés selon l'invention est choisi parmi le groupe des ligands naturels : la 15d-PGJ2, les prostaglandines Al et D2, les acides 9- et 13hydoxyoctadécanoïques, les dérivés des LDL oxydées. Un de ces ligands agonistes de PPARy peut également être choisi parmi le groupe des ligands synthétiques : la troglitazone, la rosiglitazone, la pioglitazone, la ciglitazone, l'englitazone, le GW 347845, le KRP-297, le JTT-501ss, le SB 213068, le GI 262570, le GW 1929, le GW 7845, le GW 0207, le L-796449, l'indométhacine et l'ibuprofène. Certains de ces ligands synthétiques sont déjà connus dans le domaine médical, mais n'ont été utilisés jusqu'à présent que dans le cadre du traitement de certaines maladies inflammatoires (comme l'athérosclérose) ainsi que de certaines formes de diabète. Avantageusement et selon l'invention, on utilise une quantité de ligand(s) agoniste(s) de PPARy en concentration dans le milieu infecté au moins suffisante pour induire et/ou pour amplifier l'expression des récepteurs mannose des macrophages présents dans le milieu infecté. Selon l'invention, l'utilisation d'un ligand agoniste de PPARy aux fins de l'élimination de micro-organismes infectieux via des macrophages stimulés, peut intéresser un milieu artificiel infecté, par exemple un milieu de culture, ou un milieu naturel infecté, par exemple un tissu vivant ou le sang périphérique, isolé ou non d'un organisme pluricellulaire-notamment un primate, notamment vivant-. L'invention s'étend, en particulier, à un procédé de traitement d'un tissu vivant ou d'une composition de sang périphérique, non isolé, d'un primate vivant-notamment de l'homme-, dans lequel on administre audit primate une quantité apte à induire et/ou à amplifier une expression des récepteurs mannose des macrophages présents dans ledit tissu ou dans ladite composition de sang périphérique. On administre donc une quantité d'au moins un ligand agoniste de PPARy, tel que précédemment cité, de manière et en quantité adaptées pour induire une distribution de ligand(s) dans ledit tissu ou ladite composition de sang périphérique, à une concentration thérapeutiquement efficace, c'est-à-dire apte à induire et/ou à amplifier l'expression des MMR des macrophages présents dans ledit tissu ou ladite composition de sang périphérique. Avantageusement, ladite concentration est au moins égale à l'EC50 définissant l'activité du ligand sur PPARy. Le tableau 1 ci-après présente les valeurs EC50 pour certains ligands agonistes synthétiques de PPARy. EC50 (M) Composés PPARy murin PPARy humain troglitazone 0,78 0,55 pioglitazone 0,55 0,58 rosiglitazone 0,076 0,043 KRP-297 0,14 0,083 JTT-501p 0,089 0,083 SB 213068 0,10 0,066 GI 262570 0,00035 0,00034 GW 1929 0,013 0,0062 GW 7845 0,0012 0,00071 GW 0207 0,14 0,044 L-796449 0,010 0,0052 @ @ 1. Activité transactivatrice de agonistes de PPARy (CERIN - N 70, Mars/Avril 2002) Selon le site visé, l'administration peut se faire par voie orale, rectale, parentérale (sous-cutanée, transdermique, intraveineuse, intramusculaire). Par ailleurs, selon le site visé, la distribution du composé actif peut circuler jusqu'à la cible via le système sanguin périphérique, ou l'atteindre par une administration topique (administration du composé directement au contact du site cellulaire à traiter). La forme galénique et les doses à administrer seront choisies en conséquence. Compte tenu de la valeur EC50 de certains des ligands agonistes de PPARy actuellement connus, on peut envisager, en particulier pour les composés cités précédemment, une utilisation à des doses efficaces sans risque de toxicité (par exemple, on peut prescrire la rosiglitazone à des doses journalières de l'ordre 4 à 8 mg pour un adulte de 70 kg). A noter que la plupart des ligands agonistes de PPARy, en particulier ceux précédemment cités, ont déjà passé avec succès les tests de toxicité dans le cadre de l'obtention de l'autorisation de mise sur le marché, comme anti-inflammatoires ou hypolipidémiants. L'invention s'étend en conséquence également à un procédé de fabrication d'une composition thérapeutique comprenant au moins un ligand agoniste de PPARy à titre de composé actif apte à induire et/ou à amplifier l'expression des récepteurs mannose des macrophages. Plus particulièrement, l'invention concerne un procédé de fabrication d'une composition thérapeutique-notamment une composition immunostimulante- destinée au traitement préventif ou curatif d'une pathologie appartenant au groupe des pathologies induites par des micro-organismes présentant sur la face extérieure de leurs parois des motifs susceptibles de former avec les récepteurs mannose des macrophages des liaisons réciproques de type ligand-récepteur, caractérisé en ce qu'on utilise une quantité thérapeutiquement efficace d'au moins un ligand agoniste du récepteur nucléaire PPARy. Selon l'invention, cette quantité est adaptée pour induire et/ou amplifier l'expression du récepteur mannose des macrophages d'un milieu corporel cible. Avantageusement et selon l'invention, lesdits microorganismes présentent sur la face extérieure de leurs parois des polysaccharides et/ou des lipopolysaccharides ayant à leurs extrémités libres des motifs mannosylés ou fucosylés. Ainsi, il peut s'agir de micro-organismes choisis parmi : Streptococcus pneumoniae, Klebsellia pneumoniae, Cryptoccocus neoformans, Mycobacterium tuberculosis, Candida albicans, Leishmania donovani, Pneumocystis carinii, Trypanosoma cruzi. Avantageusement, une composition thérapeutique obtenue par un procédé de fabrication selon l'invention est également adaptée pour le traitement thérapeutique d'une pathologie appartenant au groupe des pathologies induites par des micro-organismes présentant sur la face extérieure de leurs parois des glycoprotéines ayant une extrémité N-acétylglucosamine. Tel est le cas du virus Influenza et de HIV-1. Avantageusement et selon l'invention, on utilise pour la fabrication de ladite composition thérapeutique au moins un ligand agoniste de PPARy choisi parmi le groupe des ligands naturels : la 15d-PGJ2, les prostaglandines Al et D2, les acides 9- et 13-hydoxyoctadécanoïques, les dérivés des LDL oxydées. On peut également choisir ce ligand parmi le groupe des ligands synthétiques : la troglitazone, la rosiglitazone, la pioglitazone, la ciglitazone, l'englitazone, le GW 347845, le KRP-297, le JTT-501ss, le SB 213068, le GI 262570, le GW 1929, le GW 7845, le GW 0207, le L-796449, l'indométhacine et l'ibuprofène. Une composition thérapeutique préparée conformément à un procédé selon l'invention, comprenant une quantité thérapeutiquement efficace d'au moins un ligand agoniste de PPARy est ainsi adaptée pour induire et/ou amplifier l'expression des MMR. Aussi, elle peut être considérée comme une composition immunostimmulante, capable d'améliorer le niveau de vigilance du système immunitaire vis-à-vis de nombreux micro-organismes infectieux, de stimuler la réponse immunitaire innée et d'amplifier les fonctions effectrices des macrophages lorsque ces derniers sont placés en présence de ces micro-organismes. Aussi, avantageusement et selon l'invention, elle est destinée à la médication de sujets immunodéprimés. Avantageusement, une composition thérapeutique obtenue par un procédé de fabrication selon l'invention, peut également comprendre un ou plusieurs autre(s) principe(s) actif(s) notamment pour procurer un effet synergique. En particulier, outre un ligand agoniste de PPARy, elle peut avantageusement renfermer une quantité d'extrait de paroi d'un microorganisme vis-à-vis duquel on cherche à se défendre. La forme galénique d'une composition thérapeutique selon l'invention est réalisée par les techniques de formulation galénique selon la voie d'administration choisie. L'invention s'étend aussi à l'utilisation d'un ligand agoniste de PPARy, naturel (notamment, la 15d-PGJ2, la prostaglandine Al ou D2, l'acide 9- ou 13-hydoxyoctadécanoïque, ou un dérivé d'une LDL oxydée) ou synthétique (notamment, la troglitazone, la rosiglitazone, la pioglitazone, la ciglitazone, l'englitazone, le GW 347845, le KRP-297, le JTT-501ss, le SB 213068, le GI 262570, le GW 1929, le GW 7845, le GW 0207, le L-796449, l'indométhacine ou l'ibuprofène) dans la fabrication d'un médicament destiné au traitement d'une pathologie appartenant au groupe des pathologies induites par des micro-organismes présentant sur la face extérieure de leurs parois des motifs susceptibles de former avec les récepteurs mannose des macrophages des liaisons réciproques de type ligand-récepteur (notamment des motifs mannosylés, un motif N-acéthylflucosamine. L'invention concerne aussi un procédé de traitement d'un milieu biologique comprenant des macrophages, un procédé d'inhibition de la prolifération de micro-organismes, un procédé de fabrication d'une composition thérapeutique, caractérisés, en combinaison, par tout ou partie des caractéristiques ci-dessus ou ci-après. D'autres buts, caractéristiques et avantages de l'invention apparaîtront à la lecture des essais expérimentaux suivants qui se réfèrent aux figures annexées, dans lesquelles : - la figure 1 est une représentation graphique de l'effet d'inhibition des ligands agonistes de PPARy sur la prolifération de Candida albicans, - la figure 2 est une représentation graphique de la capacité des macrophages à phagocyter Candida albicans selon que PPARy est ou non inhibé, - la figure 3 montre des spectres de distribution de fluorescence reflétant l'induction du récepteur mannose par divers ligands agonistes de PPARy, - la figure 4 montre des spectres de distribution de fluorescence reflétant l'implication de PPARy dans la régulation de l'expression du MMR, - la figure 5 est une représentation graphique de l'implication de PPARy dans la régulation de l'expression du MMR, - la figure 6 est une représentation graphique de l'effet d'amplification de divers ligands agonistes de PPARy sur l'expression du récepteur mannose, - la figure 7 est une représentation graphique de l'effet in vivo de la 15d-PGJ2 sur la capacité des macrophages à produire des agents oxydants, - la figure 8 est une représentation graphique du niveau d'expression des récepteurs mannose des macrophages de souris SWISS et RAG-2 infectés par C. albicans, - la figure 9 est une représentation graphique de l'effet in vivo de la 15d-PGJ2 sur la prolifération de C. albicans, au niveau de l'oesophage, de l'estomac et du caecum. # EXPERIMENTATIONS IN VITRO Les travaux menés in vitro ont permis de mettre en évidence une stimulation des propriétés anti-infectieuses des macrophages vis- à-vis de différents micro-organismes présentant à leur surface des motifs mannosylés -notamment C. albicans-, via l'augmentation de l'activité phagocytaire des macrophages et de leur capacité à produire des agents oxydants. Il a été également montré que le récepteur associé à l'augmentation de la phagocytose de C. albicans par les macrophages traités par les ligands spécifiques de PPARy était bien le MMR. De plus, l'utilisation d'un antisens spécifique du récepteur mannose a permis de montrer une implication directe de l'induction de l'expression de ce récepteur dans l'augmentation du métabolisme oxydatif des macrophages. Enfin, des expériences de transfection d'un vecteur rapporteur CMV-PPARy dans des cellules RAW 264. 7, connues pour exprimer faiblement PPARy, ont révélé une régulation de l'expression des MMR par une voie de signalisation particulière dans laquelle est impliqué le récepteur nucléaire PPARy. Le matériel et les méthodes utilisées sont présentés ci-après. Les souches de C. albicans ont été isolées à partir d'échantillons de sang d'un patient atteint de candidose, selon des techniques classiques. Les macrophages, quant à eux, proviennent du péritoine de souris femelles SWISS (Centre d'élevage, Etablissement Janvier, France) et sont cultivés dans un milieu de culture SFM ("serum-free medium") optimisé pour la culture des macrophages, commercialisé par la société GibcoBRL, France. L'adhésion des cellules se produit après environ 2 heures de culture à 37 C sous atmosphère à 5 % de CO2. Les cellules n'adhérant pas à la boîte de culture sont éliminées par rinçage au PBS (GibcoBRL, France). Pour les différents tests, les cellules adhérentes restant sur les boîtes sont stimulées par la 15d-PGJ2, la ciglitazone ou la rosiglitazone (Merck-LIPHA, France) à différentes concentrations. Pour étudier la prolifération de C. albicans, des mesures d'incorporation de [3H]uracile (Amersham Pharmacia Biotech, France) dans les ARN sont effectuées avec des cellules en cours de multiplication. Pour chaque essai, 2.105 macrophages par puits sont cultivés pendant 2 heures sur des plaques Falcon de 96 puits, dans du SFM à 37 C et sous atmosphère à 5 % de CO2. Les macrophages sont stimulés par les agonistes de PPARy pendant 24 heures, puis infectés par des blastoconidies de C. albicans dans une proportion macrophages:levures de 1:200, pendant 6 heures à 37 C, sous atmosphère humidifiée contenant 5 % de CO2. Pour certains tests, l'uracile tritié (1 Ci) est ajouté à chaque puits. Après un challenge de 6 heures, les surnageants des puits contenant les blastospores non-adhérents sont collectés et centrifugés. Le culot est lavé au PBS. La radioactivité incorporée dans les ARN de levure est comptée avec le fluide de scintillation BCS (Amersham Pharmacia Biotech, France). Les monocouches contenant des levures adhérentes ou phagocytées sont lavées deux fois au PBS, puis lysées avec NaOH (1M) et neutralisées par HC1 ( 1 M). Le liquide de scintillation est alors ajouté à chaque fiole et la radioactivité est comptée au moyen d'un compteur Pharmacia LKB1217. Le nombre de désintégrations par minute (dpm) permet d'apprécier le niveau de prolifération de C. albicans pour chacun des essais. Pour étudier le mécanisme d'ingestion de C. albicans par les macrophages, des levures préalablement marquées par [3H]uracile sont utilisées. Trois colonies de C. albicans sont dispersées dans 1 ml de bouillon Sabouraud contenant 150 Ci de [3H]uracile. Après 24 heures de culture à 37 C sous agitation, les blastospores marqués sont centrifugés et resuspendus dans le SFM enrichi avec 1,8 % de glucose. Pour chaque essai, les monocouches de macrophages cultivées sur les plaques 24 puits sont traitées avec les agonistes de PPARy pendant 20 heures, puis infectées avec C. albicans marqué et viable (dans une proportion macrophages:levures de 1: 1) et laissées à incuber pendant 1 heure à 37 C, puis 2 heures à 5 C. Soumis à 5 C, les mécanismes de phagocytose sont bloqués. Au terme de chacune des périodes d'incubation (1 heure ou 2 heures), le milieu de culture est prélevé, les monocouches de macrophages sont rincées deux fois au PBS. Les solutions de rinçage sont convervées. Les monocouches sont lysées par NaOH (1M) puis neutralisées par HC1 (1M). La radioactivité du surnageant et celle des solutions de rinçage, ainsi que la radioactivité contenue dans le lysat cellulaire sont comptées séparément avec le fluide de scintillation BCS au moyen d'un compteur de scintillation de liquide. L'index de phagocytose est évalué de la manière suivante : % Phagocytose = L\(37 C - 5oC)dpmmonocouches / (A(35-C - 5oC)dpmmonocouches +dpmsumageant) Pour les essais de cytométrie en flux, les macrophages sont rincés au PBS glacé. Le marquage des MMR est réalisé pendant une heure, dans la glace, à la manière d'un ligand spécifique conjugué avec de l'albumine bovine mannosylée marquée à la fluorescéine FITC (840 nM) (SIGMA, France). Afin de faciliter la sélection des populations de cellules viables, une coloration à l'iodure de propidium est réalisée. Toutes les analyses sont effectuées par le FACScalibur (Becton-Dickinson) en utilisant le logiciel CellQuest. Les analyses de l'ADNc des MMR par RT-PCR sont menées de la manière suivante. Les ARN totaux sont isolés des cellules au moyen du réactif "Extract All" (EUROBIO, France). Les ARN sont reverse- transcrits en utilisant le kit "First-Strand DNA Synthesis" (PROMEGA, France), durant 30 cycles d'amplification (30s à 95 C, 1 min à 48 C et 1 min à 68 C). La séquence des amorces (MMR sens et MMR antisens) utilisées pour obtenir l'ADNc du MMR sont présentées dans le tableau 2. Noms Séquences MMR sens 5'GCTCTAGAATGGAACACACACTCTGGGCCATG3' g os! ~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~ mo MMR antisens 5'TACCACTTGTTTTCAAACTTGAA3, ODN 5'GAGTGGGCTTACGTGGTTGT3' ANS 5'GGTTCCTTTCCTGATTTACG3' Tableau 2 Pour les tests de transfections, les macrophages de la lignée cellulaire murine RAW 267. 4 (QBiogene, France) sont maintenus en phase de croissance exponentielle dans du DMEM complémenté avec 10 % de PBS. La veille de la transfection, les cellules sont transférées sur des plaques de 6 puits. Le milieu est alors remplacé par du DMEM dépourvu de sérum et les cellules sont transfectées de manière transitoire pendant 18 heures à 60-80 % de confluence avec le réactif de transfection FuGENE 6 (ROCHE, Suisse) contenant le vecteur à transfecter (CMV-luciférase ou CMV-PPARy), en proportion ADN:FuGENE 6 de 1 :2, une quantité d'ADN de 3 g. Le jour de la stimulation, le milieu est remplacé par le milieu complet (DMEM + FBS 10 %) contenant les différentes molécules à tester. Les cellules sont collectées 24 heures plus tard puis analysées par cytométrie en flux. La transfection du vecteur CMV-luciférase (PROMEGA, France) sert de contrôle. La séquence pCMX-mPPARy (Forman B. M. et al., Cell, 1995,83:803-812) code pour le récepteur nucléaire PPARy murin. Concernant le traitement à l'antisens ODN, une séquence complémentaire à la région 3' non traduite de l'ARNm du MMR (Yamamoto et al., Infect Immun, 1997, 65:1077-82), on incube l'antisens ODN (100 nM) avec 10 g de lipide cationique Lipofectin (GIBCO, France) à 37 C pendant 5 min selon la méthode Capacciolis et al. (Biochem Biophys Res Commun, 1998, 197:818-25) puis on l'ajoute aux macrophages cultivés dans le DMEM sans sérum. Les cellules sont incubées pendant 4 heures à 37 C avec 5 % de CO2 atmosphérique. Le milieu est remplacé par du SFM contenant l'antisens ODN mais sans Lipofectin. Les cultures sont incubées pendant 3 jours avec un changement journalier du milieu. La concentration de l'antisens ODN utilisée n'entraîne aucune toxicité significative sur les macrophages. Les macrophages non traités et les macrophages traités avec la Lipofectin seule servent de contrôle. La séquence nucléique de l'antisens ODN est exposée dans le tableau 2. Le même traitement est réalisé avec un antisens non spécifique de l'ARNm du MMR, l'antisens ANS dont la séquence nucléique est exposée dans le tableau 2. Pour les tests de production d'agents oxydants, l'explosion respiratoire oxygène-dépendante des macrophages traités par les agonistes de PPARy est mesurée par chimiluminescence. Les macrophages (2.105) sont transférés sur des boîtes de culture de 5 mm de diamètre. Après activation des cellules, la production d'agents oxydants par les macrophages, en présence ou en absence de C. albicans, est mesurée par chimiluminescence en présence de luminol à 37 C. L'émission de chimiluminescence est enregistrée en continu pendant 1 heure après incubation des cellules avec le luminol (66 M). Pour évaluer la production de l'anion superoxyde (02-), la chimiluminescence est mesurée en présence de SOD, un inhibiteur spécifique de la production d'anion superoxyde. Pour évaluer la production d'oxyde nitrique (NO), la chimiluminescence est mesurée en présence de L-NMMA (NG-monométhylarginine, un compétiteur spécifique de L-arginine pour la production de NO). Aucun des inhibiteurs n'affecte la viabilité aux concentrations utilisées. Les analyses statistiques se basent sur la mesure de la surface sous la courbe et sont exprimées en coups x secondes. Essai 1 : Stimulation de l'activité candistatique des macrophages péritonéaux murins par les ligands spécifiques des PPARy. L'action des macrophages traités par les ligands spécifiques de PPARy dans l'inhibition de prolifération de Candida albicans est étudiée face à un challenge in vitro de 6 heures avec la souche 98-26135 (Coste A. et al., J. Antimicrobial Chemotherapy, 2002,49:731-740) La prolifération de C. albicans a été déterminée en présence de macrophages cultivés selon la technique radiométrique. La figure 1 expose l'inhibition de la prolifération (en %) des C. albicans en présence des macrophages non traités (C) ou traités (T) par la 15d-PGJ2, la ciglitazone (Cigli), et la rosiglitazone (Rosi). La figure 1, montre que les macrophages développent une activité fongistatique propre, inhibant de 18 % la croissance de C. albicans. En présence des ligands agonistes de PPARy dans le milieu, les macrophages possèdent une activité candistatique plus importante. En effet, l'inhibition de prolifération est multipliée environ par trois (par rapport au contrôle) quand les macrophages sont traités par les différentes drogues. Les ligands agonistes de PPARy stimulent l'activité candistatique des macrophages. Essai 2 : de la phagocytose de Candida albicans et de la production d'agents oxydants par les ligands spécifiques des PPARy. Comme les mécanismes de défense contre C. albicans sont essentiellement dépendants de la capacité des macrophages à phagocyter les levures et à exercer leur activité fongicide en produisant des molécules toxiques (IROs et NO), la modulation de la phagocytose de cette levure ainsi que la production d'agents oxydants des macrophages traités par les ligands spécifiques de PPARy, en absence ou présence du GW 9662 (CAYMAN CHEMICAL, Michigan, USA), un antagoniste irréversible de PPARy, ont été étudiées. La figure 2 fait état de la capacité de phagocytose (exprimée en index de phagocytose) des macrophages péritonéaux non traités (C) ou traités par des ligands spécifiques de PPARy (15d-PGJ2, ciglitazone et rosiglitazone) en absence ou présence du GW 9662, face à un challenge d'une heure avec Candida albicans dans les conditions d'un rapport macrophages:levures de 1:1. La figure 2 montre qu'il existe une augmentation significative du nombre de levures phagocytées quand les macrophages sont traités par les ligands agonistes de PPARy. Le nombre de levures internalisées par les macrophages est augmenté de 19 % par le traitement avec la 15d-PGJ2, de 13 % avec la ciglitazone (Cigli), de 10 % avec la rosiglitazone (Rosi), comparé aux macrophages non traités (C) qui ont un index de phagocytose de 46 %. De plus, l'augmentation de la capacité de phagocytose des macrophages traités par les agonistes de PPARy est inhibée par le GW 9662. La capacité des macrophages à produire de l'anion superoxyde et du monoxyde d'azote et leur modulation par la 15d-PGJ2 ont été également étudiées par la méthode de chimiluminescence qui permet d'évaluer non seulement la production d'anions superoxydes mais aussi celle du peroxynitrite produit au cours de l'interaction entre le monoxyde d'azote et l'anion superoxyde. Afin d'évaluer la production d'anion superoxyde, la chimiluminescence a été mesurée en présence ou non de superoxyde dismutase (enzyme métabolisant O2- en H202) alors que la production de monoxyde d'azote est évaluée en présence d'un compétiteur de l'arginine qui est le L-NMMA. Production d'agents oxydants pendant 1 heure (C x S : x secondes) Traitements- Levure + Levures Contrôle 7874 65 7664 180 SOD L-NMMA 15D-PGJ2 7469 238 13905 328 7228 212 14258 216 Tableau 3 : des ligands agonistes de PPARy sur la production d'agents oxydants par les macrophages en présence ou en absence de levure. L'évaluation de la production d'agents oxydants a été déterminée sur des macrophages en culture par la technique de chimiluminescence. Le tableau 3 montre que les macrophages, mis en présence des différents traitements, produisent la même quantité basale d'agents oxydants que les macrophages résidents. Les ligands spécifiques de PPARy seuls (en l'absence de C. albicans) n'induisent pas d'augmentation de la production des agents oxydants par les macrophages. Par contre, l'ajout des levures augmente la production d'agents oxydants. Les ligands agonistes de PPARy pré-activent la capacité des macrophages à produire les agents oxydants. En réponse à une infection par C. albicans, les macrophages dans cet état d'activation produisent principalement de l'anion superoxyde. En effet, en présence de superoxyde dismutase (SOD), un inhibiteur spécifique de la production des superoxydes, la production d'agents oxydants est significativement inhibée. A l'inverse, la chimiluminescence mesurée en présence de L-NMMA n'est pas inhibée. Ainsi, les macrophages dans cet état d'activation ne produisent pas du monoxyde d'azote. Ces résultats qui montrent que l'antagoniste de PPARy bloque les effets candistatiques des ligands de PPARy suggèrent que PPARy est impliqué dans l'augmentation de l'activité fongicide des macrophages sous l'effet des différents traitements. Essai 3 : de l'expression des récepteurs mannose par les ligands spécifiques de PPARy. Comme le récepteur mannose est impliqué dans la phagocytose C. albicans ainsi que de nombreux autres micro-organismes pathogènes présentant sur la face extérieure de leurs parois des résidus mannosylés, l'expression de ce récepteur à la surface des macrophages traités par les ligands agonistes de PPARy a été étudiée par cytométrie en flux grâce à la fixation de molécules d'albumine bovine mannosylée (mBSA) marquées à la fluorescéine (FITC, fluorothioisocyanate). Les macrophages ont été cultivés pendant 24 heures en présence de 1 M de 15d-PGJ2, de 5 p.M de ciglitazone ou de 5 M de rosiglitazone. Les cellules sont ensuite incubées dans la mBSA marquée au FITC et analysées par cytométrie en flux. La distribution de la fluorescence de la population cellulaire analysée est représentée à la figure 3. La figure 3 montre que la quantité d'albumine bovine mannosylée marquée à la fluorescéine présente sur les macrophages est significativement augmentée quand les cellules sont traitées (T) par les ligands spécifiques de PPARy en comparaison avec les cellules non traitées (C). La spécificité de la mBSA pour le récepteur mannose suggère que les ligands spécifiques de PPARy induisent l'expression des récepteurs mannose à la surface des macrophages. L'analyse de régression des résultats exposés aux figures 2 et 3 indique une association linéaire entre la quantité de MMR et la capacité de phagocytose après traitement par les différents ligands de PPARy des macrophages, démontrant ainsi une vraie corrélation entre l'expression des récepteurs mannose influencée par les différents traitements et la capacité de ces cellules à internaliser C. albicans (r = 0,942). Essai 4 : directe de PPARy dans la régulation de l'expression des récepteurs mannose par les ligands spécifiques des PPARy. Afin de déterminer si le facteur de transcription PPARy est impliqué dans la sur-expression du récepteur mannose induite par les ligands spécifiques de PPARy, deux approches différentes ont été utilisées. Tout d'abord, nous avons transfecté (pendant 18 heures) deux vecteurs rapporteurs, CMV-luciférase et CMV-PPARy, où le gène de la luciférase et le gène de PPARy sont sous la dépendance d'un promoteur fort, celui du cytomégalovirus. Nous avons effectué ces transfections dans la lignée RAW 264. 7, connue pour exprimer faiblement PPARy. Après traitement avec les ligands spécifiques de PPARy les récepteurs mannose présents à la surface des cellules ont été quantifiés par cytométrie en flux. Les cellules RAW 264. 7 ont ensuite été cultivées pendant 24 heures en présence d'l M de 15d-PGJ2, de 5 M de ciglitazone ou de 5 M de rosiglitazone. Les cellules sont incubées avec la mBSA marquée au FITC et analysées par cytométrie en flux. La distribution de la fluorescence de la population cellulaire analysée est représentée à la figure 4 et la moyenne géométrique des intensités de fluorescence correspondantes, reportées dans le tableau 4 ci-après. Moyenne géométrique de l'intensité de B fluorescence Traitements CMV-LUC CMV-PPAR-[gamma] Contrôle 47,51 53,87 15d-PGJ2 44,29 73 Ciglitazone 38,51 ~ ~ 64,3 Rosiglitazone 37,94 61,51 Tableau 4 Dans une deuxième étape, l'induction de l'expression du récepteur mannose des macrophages péritonéaux murins sous l'effet des différents traitements a été étudiée par cytométrie de flux en présence d'un antagoniste irréversible de PPARy, le GW 9662. La figure 4 montre que dans les cellules RAW 264. 7 contrôle (C), cellules transfectées avec CMV-luciférase, le traitement avec les ligands de PPARy n'a aucun effet sur l'expression des récepteurs mannose. Par ailleurs, la transfection des cellules RAW 264. 7 avec le vecteur CMV-PPARy restaure l'effet des différents traitements sur l'induction de l'expression des récepteurs mannose. Ceci démontre que PPARy est directement impliqué dans la régulation de l'expression du récepteur mannose par les ligands spécifiques de PPARy. Ces résultats sont confirmés par la figure 5 qui montre que l'augmentation de l'expression du récepteur mannose à la surface des macrophages sous l'effet de la 15d-PGJ2 est antagonisée par le GW 9662. Pour ce faire, les macrophages ont été cultivés 24 heures en présence ou en absence du GW 9962 (0,1 M), puis incubées avec la mBSA marquée au FITC et analysées par cytométrie en flux. Ces deux expériences montrent l'implication de PPARy dans la sur-expression des récepteurs mannose à la surface des macrophages. Essai 5 : de l'expression du récepteur mannose à la surface des macrophages sous l'effet de différents agonistes de PPARy est dépendante d'une régulation transcriptionnelle. Afin de déterminer si l'activation de PPARy conduit à une induction transcriptionnelle du récepteur mannose deux techniques différentes ont été réalisées en parallèle. Dans cet objectif, une première approche a consisté à transfecter un antisens spécifique de l'ARNm des récepteurs mannose dans des macrophages et les récepteurs mannose présents à la surface des cellules ont été quantifiés par cytométrie en flux. Parallèlement, une autre technique a été utilisée et a consisté à quantifier directement l'expression des ARNm du récepteur mannose, sous l'effet des différents traitements, par RTPCR quantitative en temps réel. Pour ce faire, les macrophages ont été traités pendant 3 jours avec l'antisens spécifique de l'ARNm du récepteur mannose (ODN). Les macrophages sont cultivés 24 heures en présence d'l M de 15d-PGJ2,5 M de ciglitazone, ou 5 M de rosiglitazone. Les cellules ont été ensuite incubées avec la mBSA marquée au FITC, puis analysées par cytométrie en flux. L'intensité de la fluorescence analysée est représentée à la figure 6. La figure 6 montre qu'en présence de l'antisens, la quantité de fluorescence est significativement inhibée quel que soient les traitements utilisés. Ces résultats indiquent d'une part que l'augmentation de la quantité de mBSA fixée sur les macrophages résulte bien d'une induction de l'expression des récepteurs mannose et, d'autre part, que cette sur-expression est le reflet direct d'une augmentation de l'expression des ARNm du récepteur mannose. Essai 6 : récepteur mannose est impliqué dans la modulation des fonctions oxydatives des macrophages par les ligands de PPARy. Cette étude a été réalisée afin de déterminer si l'augmentation de la production d'agents oxydants sous l'effet des agonistes de PPARy dépendait ou non de la modulation des récepteurs mannose par ces différents traitements. Dans cet objectif, la modulation de la production d'agents oxydants par les macrophages transfectés par l'antisens spécifique des ARNm des récepteurs mannose a été étudiée. Après traitement avec les agonistes de PPARy, le dosage de la quantité d'agents oxydants produits par les macrophages transfectés a été réalisé par chimiluminescence. Les résultats sont présentés dans le tableau 5. Production d'agents oxydants (coups x secondes) Traitements Sans antisens Avec ODN Avec ANS Contrôle 6737 139 6795 178 6972 90 15d-PGJ2 9161 ~ 85 7012 ~ 98 9678 106 Ciglitazone 8398 104 7109 155 8322 183 Rosiglitazone 8960 179 7197 77 8813 190 Tableau 5 : du récepteur mannose dans la production d'agents oxydants des macrophages traités par les ligands de PPARy. La production d'agents oxydants a été déterminée sur des macrophages en culture par la technique de chimiluminescence. C x S : x secondes pendant lh. Les macrophages sont incubés pendant 3 jours avec un antisens spécifique (ODN) ou avec un antisens non spécifique (ANS) de l'ARNm du récepteur mannose. Le tableau 4 montre que l'augmentation de la production d'agents oxydants par les macrophages induite par les traitements est antagonisée par l'antisens spécifique de l'ARNm du récepteur mannose Avec l'antisens non spécifique du récepteur mannose (ANS) aucun effet sur l'inhibition de la production d'agents oxydants n'est observé. Ainsi, la production de radicaux libres oxygénés est corrélée avec l'induction de l'expression des récepteurs mannose. # EXPERIMENTATIONS IN VIVO Suite aux travaux menés obtenus in vitro qui montraient que le traitement des macrophages avec les ligands de PPARy stimulait l'activité antifongique via PPARy, des travaux ont été menés in vivo en vue de valider ces résultats. L'étude in vitro a été réalisée sur des lots de 10 souris, soit immunocompétentes (SWISS) ou immunodéficientes (RAG-2), qui ont été infectées par C. albicans. Ces souris ont été traitées ou non par la 15d-PGJ2. Dans un premier temps, il a été vérifié que les différents traitements réalisés in vivo modifiaient bien la capacité de phagocytose des macrophages. Dans un deuxième temps, l'expression du récepteur mannose à la surface des macrophages extraits des souris traitées in vivo par la 15d-PGJ2 a été étudiée par cytométrie en flux. Les souris immunodéficientes type RAG-2 (Centre d'élevage du CNRS, Orléans, France) possédant un déficit combiné sévère de l'immunité à médiation cellulaire et humorale, n'ont pas de lymphocytes B et T, sont utilisées en pathologie virale type SIDA/HIV. Dans ce modèle utilisant des RAG-2, il a été possible de reproduire une candidose orogastrointestinale identique à celle observée chez les patients immunodéprimés. Nous avons ainsi examiné, in vivo, l'efficacité antifongique de cette nouvelle stratégie thérapeutique. En parallèle, ce même protocole a été réalisé sur des souris SWISS immunocompétentes (Centre d'élevage - Etablissement Janvier, France). Les souris hébergées dans des cages stériles ont été infectées par gavage de 500 l d'une suspension de levures (2.10' cfu.ml-1). Cette quantité de levure est suffisante pour établir des candidoses orogastrointestinales chez toutes les souris. Des doses pharmacologiques de 15d-PGJ2 (0,01 moles) ont été injectées par voie intra-péritonéale un jour avant l'infection par C. albicans. Ces injections ont été renouvelées tous les jours durant 5 jours. Les macrophages ont été ensuite recueillis par lavage de la cavité péritonéale des souris infectées traitées ou non par la 15d-PGJ2. La suspension macrophagique a été ajustée à 106/ml dans du SFM (GibcoBRL, France) complémenté de glutamine, de pénicilline et de streptomycine et a été distribuée à raison de 1 ml par puits dans les microplaques de 24 puits. Après une incubation de 2 heures à l'étuve à 37 C, 5 % CO2, les cellules non adhérentes ont été éliminées par deux rinçages en PBS. A la suite de ces 2 heures, les tapis cellulaires en monocouches contiennent 95 % de macrophages et sont utilisés en vue d'évaluer leur capacité de phagocytose ainsi que leur capacité à produire des agents oxydants. Afin d'évaluer la capacité des macrophages à phagocyter C. albicans, une technique basée sur l'incorporation de nucléotides radioactifs (Uracile tritié) au niveau de l'ARN des levures en voie de multiplication a été réalisée. Les levures pré-marquées sont déposées sur les tapis macrophagiques et mises à incuber à 37 C sous 5 % CO2. A l'issue d'une heure d'incubation, la radioactivité des surnageants et des produits de rinçage des puits, ainsi que celle contenue dans les lysats cellulaires obtenus par lyse avec du NaOH (IN) seront mesurées indépendamment. Sachant que la radioactivité mesurée dans le lysat est proportionnelle à la quantité de levures phagocytées et que celle mesurée dans les surnageants est proportionnelle à la quantité de levures externes, le pourcentage de levures phagocytées par rapport à la quantité de levures totales sera déterminé selon la formule suivante : % Phagocytose = dpmlysat / (dpmlysat + dpmsurnageant) Afin d'évaluer la production d'agents oxydants (radicaux libres oxygénés et monoxyde d'azote) par les macrophages après la mise en culture des macrophages, les activités conjointes de la NADPH oxydase et de la NO synthase inductible sont mesurées par chimiluminescence en présence d'une sonde chimiluminogène, Luminol (SIGMA, France) : 5-amino2,3-diydro-l,4phtalazinedione. La production de chimiluminescence sera analysée avec un luminomètre (Wallac Victor II, Finlande) piloté par un ordinateur. Le luminol permet, en présence d'agents oxydants, l'émission de photons captés par le photomultiplicateur de la chambre noire du luminomètre thermostaté à 37 C et transformés en impulsions électriques quantifiables. Les valeurs de chimiluminescence seront enregistrées continuellement pendant 1 heure après incubation des cellules avec le luminol (66 M) et en présence ou non de levures. Pour le MMR, les macrophages des souris infectées par C. albicans et traitées ou non in vivo par la 15d-PGJ2 ont été recueillis par lavage de la cavité péritonéale de ces souris. La suspension est ajustée à 106/ml dans du SFM et mise à incuber pendant 1 heure à 4 C avec de l'albumine bovine mannosylée (mBSA) marquée à la fluorescéine (14 M). La quantité de molécule de mBSA fixée, reflet direct de la quantité de récepteurs mannose présente sur les cellules, a été analysée à l'aide d'un cytomètre en flux (FACScalibur, Becton Dickinson). Par la suite, il a été établi que les traitements des souris par les ligands agonistes de PPARy modifiaient l'infection candidosique au niveau de plusieurs organes (#sophage, estomac, caecum, reins, foie). Pour ce faire, après infection par C. albicans, les souris SWISS et RAG-2 ont été traitées par la 15d-PGJ2 comme précédemment décrit. En cours et en fin d'expérimentation, des prélèvements sanguins ont été effectués afin de suivre la présence des levures dans le sang des souris. Aucun échantillon n'a montré la présence de levures dans le sang, signifiant ainsi qu'il n'y a eu aucune dissémination de l'infection fongique. Au terme du protocole, les souris ont été euthanasiées et les différents organes ont été prélevés stérilement en vue de quantifier le nombre de levures présentes dans les différents organes par CFU et PCR quantitative en temps réel. Pour quantifier le nombre de levures présentes dans les différents organes par CFU, après homogénéisation de chaque tissu, plusieurs dilutions sont réalisées et ensemencées dans des boîtes de culture. Les boîtes sont incubées à 35 C pendant 24 à 48 heures et le nombre de colonies est alors compté. Pour quantifier le nombre de levures présentes dans les différents organes par PCR, après homogénéisation des différents organes, l'ADN total est extrait par la méthode phénol/chlorophorme et soumis à une Q-PCR en temps réel. La quantification d'ADN de C. albicans est réalisée sur automate LightCycler (Roche Molecular Biochemicals, Suisse). Les amorces utilisées ont été choisies sur les régions conservées du gène codant pour l'ARNr 18S fongique. La détection se fait par hybridation de deux sondes marquées spécifiques de C. albicans (transfert de fluorescence). Essai 7: Stimulation de la phagocytose de Candida albicans et de la production d'agents oxydants des macrophages par un traitement in vivo par la 15d-PGJ2. L'étude a été réalisée sur des souris immunocompétentes ou immunodéficientes de type RAG-2, (souris qui possèdent un déficit combiné sévère de l'immunité à médiation cellulaire et humorale, n'ont pas de lymphocytes B et T) traitées ou non par le 15d-PGJ2, puis infectées par Candida albicans (culture, par la technique radiométrique, face à un challenge d'une heure avec C. albicans, dans un rapport 1:1). Le tableau 5, ci-après, fait état de la capacité de phagocytose des macrophages péritonéaux prélevés sur des souris SWISS ou RAG-2 infectées par Candida albicans, traités ou non in vivo par la 15d-PGJ2. Les résultats présentés dans ce tableau montrent que les macrophages extraits des souris SWISS et des souris RAG-2, traitées in vivo par la 15d-PGJ2 présentent une capacité de phagocytose beaucoup plus importante que les macrophages extraits des souris non traitées in vivo (contrôle). Ainsi l'administration par voie intra-péritonéale de la 15d-PGJ2 augmente la capacité des macrophages à internaliser C. albicans. Index de phagocytose Traitements Contrôle 15d-PGJ2 SWISS 42,97 ~ 1,20 65,26 ~ 2,11 RAG-2 59,82 2,43 76,32 ~ 1,89 'l'ableau 5 La capacité des macrophages à produire des agents oxydants a été ensuite déterminée, ainsi que la modulation de cette production par le traitement in vivo avec de la 15d-PGJ2. L'évaluation de la production d'agents oxydants par les macrophages, en présence ou en absence de la levure, a été déterminée sur des macrophages en culture par la technique de chimiluminescence. La figure 7 expose les résultats obtenus, en nombre de coups secondes (C x S) comptabilisés pendant 1 heure, pour chaque test. La figure 7 montre que les macrophages extraits des souris SWISS et RAG-2, traitées in vivo par la 15d-PGJ2 produisent la même quantité basale d'agents oxydants que les macrophages extraits des souris contrôles. Le traitement des souris avec la 15d-PGJ2 n'induit donc pas une augmentation de la production des agents oxydants par les macrophages. Néanmoins, l'ajout des levures augmente la production d'agents oxydants. Essai 8: Amplification de l'expression des récepteurs mannose par un traitement in vivo avec la 15d-PGJ2. Comme le récepteur mannose est impliqué dans la phagocytose de nombreux micro-organismes pathogènes comme en particulier C. albicans, l'expression de ce récepteur à la surface des macrophages extraits des souris traitées in vivo par la 15d-PGJ2 a été étudiée par cytométrie en flux. La figure 8 montre que la quantité d'albumine bovine mannosylée marquée à la fluorescéine présente sur les macrophages est significativement augmentée quand les cellules sont extraites des souris traitées in vivo par la 15d-PGJ2. Ceci suggère que le traitement des souris SWISS et RAG-2 avec la 15d-PGJ2 induit une augmentation de l'expression des récepteurs mannose à la surface des macrophages. L'analyse de régression des résultats exposés à la figure 8 et au tableau 5 indique une association linéaire entre la quantité de MMR à la surface des macrophages et la capacité de phagocytose de ces cellules après traitement des souris par la 15d-PGJ2, démontrant ainsi une vraie corrélation entre l'expression des récepteurs mannose influencée par les traitements et la capacité de ces cellules à internaliser C. albicans. Essai 9 : de l'infection candidosique par un traitement in vivo avec la 15d-PGJ2 Dans une deuxième étape, il a été établi que les traitements modifiaient l'infection candidosique au niveau de plusieurs organes (#sophage, estomac, caecum, reins, foie). Pour ce faire, après infection par C. albicans, les souris SWISS et RAG-2 ont été traitées par la 15d-PGJ2. En cours et en fin d'expérimentation, des prélèvements sanguins ont été effectués afin de suivre la présence des levures dans le sang des souris. Aucun échantillon n'a montré la présence de levures dans le sang, signifiant ainsi qu'il n'y a eu aucune dissémination de l'infection fongique. Au terme du protocole, les souris ont été euthanasiées et les différents organes ont été prélevés stérilement en vue de quantifier le nombre de levures présente dans les différents organes par CFU et PCR quantitative en temps réel. Les résultats obtenus sur l'#sophage, l'estomac, et le caecum, sont présentés à la figure 9. Les deux techniques de quantification du nombre de levures montrent une diminution significative de la colonisation des différents organes chez les souris traitées par la 15d-PGJ2 par rapport aux souris non traitées (C). Au niveau du foie et des reins, aucune colonisation par la levure n'est observée montrant ainsi une absence de dissémination de l'infection fongique. REVENDICATIONS 1/ Procédé de fabrication d'une composition thérapeutique destinée au traitement préventif ou curatif d'une pathologie appartenant au groupe des pathologies induites par des micro-organismes présentant sur la face extérieure de leurs parois des motifs susceptibles de former avec les récepteurs mannose des macrophages des liaisons réciproques de type ligand-récepteur, caractérisé en ce qu'on utilise une quantité thérapeutiquement efficace d'au moins un ligand agoniste du récepteur nucléaire PPARy. 2/ Procédé de fabrication d'une composition thérapeutique selon la revendication 1, caractérisé en ce que lesdits microorganismes présentent sur la face extérieure de leurs parois des polysaccharides et/ou des lipopolysaccharides ayant à leurs extrémités libres des motifs mannosylés ou fucosylés. 3/ Procédé de fabrication d'une composition thérapeutique selon la revendication 2, caractérisé en ce que lesdits microorganismes sont choisis parmi : Streptococcus pneumoniae, Klebsellia pneumoniae, Cryptoccocus neoformans, Mycobacterium tuberculosis, Candida albicans, Leishmania donovani, Pneumocystis carinii, Trypanosoma cruzi. 4/ Procédé de fabrication d'une composition thérapeutique selon la revendication 1, caractérisé en ce que lesdits microorganismes présentent sur la face extérieure de leurs parois des glycoprotéines ayant une extrémité N-acétylglucosamine. 5/ Procédé de fabrication d'une composition thérapeutique selon la revendication 4, caractérisé en ce que lesdits microorganismes sont choisis parmi : le virus Influenza et HIV-1. 6/ Procédé de fabrication d'une composition thérapeutique selon l'une des revendications 1 à 5, caractérisé en ce qu'au moins un des ligands agonistes de PPARy est choisi parmi le groupe des ligands naturels : la 15d-PGJ2, les prostaglandines Alet D2, les acides 9- et 13hydoxyoctadécanoïques, les dérivés des LDL oxydées. 7/ Procédé de fabrication d'une composition thérapeutique selon l'une des revendications 1 à 6, caractérisé en ce qu'au moins un des ligands agonistes de PPARy est choisi parmi le groupe des ligands synthétiques : la troglitazone, la rosiglitazone, la pioglitazone, la ciglitazone, l'englitazone, le GW 347845, le KRP-297, le JTT-501ss, le SB 213068, le GI 262570, le GW 1929, le GW 7845, le GW 0207, le L-796449, l'indométhacine et l'ibuprofène. 8/ Procédé de fabrication d'une composition thérapeutique selon l'une des revendications 1 à 7, caractérisé en ce que ladite composition thérapeutique est destinée à la médication de sujets immunodéprimés. 9/ Procédé de traitement extra-corporel d'un milieu biologique comprenant des macrophages, caractérisé en ce qu'on introduit dans ledit milieu biologique une quantité efficace d'au moins un ligand agoniste du récepteur nucléaire PPARy, adaptée pour induire et/ou amplifier l'expression des récepteurs mannose des macrophages. 10/ Procédé selon la revendication 9, caractérisé en ce qu'au moins un des ligands agonistes de PPARy est choisi parmi le groupe des ligands naturels : la 15d-PGJ2, les prostaglandines Al et D2, les acides 9- et 13hydoxyoctadécanoïques, les dérivés des LDL oxydées. 11/ Procédé selon l'une des revendications 9 ou 10, caractérisé en ce qu'au moins un des ligands agonistes de PPARy est choisi parmi le groupe des ligands synthétiques : la troglitazone, la rosiglitazone, la pioglitazone, la ciglitazone, l'englitazone, le GW 347845, le KRP-297, le JTT- 501 p, le SB 213068, le GI 262570, le GW 1929, le GW 7845, le GW 0207, le L-796449, l'indométhacine et l'ibuprofène. 12/ Procédé d'inhibition extra-corporelle de la prolifération de micro-organismes présentant sur la face extérieure de leurs parois des motifs susceptibles de former avec les récepteurs mannose des macrophages des liaisons réciproques de type ligand-récepteur, caractérise en ce qu'on place, dans un milieu infecté par lesdits micro-organismes et au contact de macrophages, une quantité efficace d'au moins un ligand agoniste du récepteur nucléaire PPARy. 13/ Procédé d'inhibition selon la revendication 12, caractérisé en ce que lesdits micro-organismes présentent sur la face extérieure de leurs parois des polysaccharides et/ou des lipopolysaccharides ayant à leurs extrémités libres des motifs mannosylés ou fucosylés. 14/ Procédé d'inhibition selon la revendication 13, caractérisé en ce que lesdits micro-organismes sont choisis parmi : Streptococcus pneumoniae, Klebsellia pneumoniae, Cryptoccocus neoformans, Mycobacterium tuberculosis, Candida albicans, Leishmania donovani, Pneumocystis carinii, Trypanosoma cruzi. 15/ Procédé d'inhibition selon la revendication 12, caractérisé en ce que lesdits micro-organismes présentent sur la face extérieure de leurs parois des glycoprotéines ayant une extrémité N-acétylglucosamine. 16/ Procédé d'inhibition selon la revendication 15, caractérisé en ce que lesdits micro-organismes sont choisis parmi : le virus Influenza et HIV-1. 17/ Procédé d'inhibition selon l'une des revendications 12 à 16, caractérisé en ce qu'au moins un des ligands agonistes de PPARy est choisi parmi le groupe des ligands naturels : la 15d-PGJ2, les prostaglandines A1 et D2, les acides 9- et 13-hydoxyoctadécanoïques, les dérivés des LDL oxydées. 18/ Procédé d'inhibition selon l'une des revendications 12 à 17, caractérisé en ce qu'au moins un des ligands agonistes de PPARy est choisi parmi le groupe des ligands synthétiques : la troglitazone, la rosiglitazone, la pioglitazone, la ciglitazone, l'englitazone, le GW 347845, le KRP-297, le JTT-501p, le SB 213068, le GI 262570, le GW 1929, le GW 7845, le GW 0207, le L-796449, l'indométhacine et l'ibuprofène. 19/ Procédé d'inhibition selon l'une des revendications 12 à 18, caractérisé en ce qu'on utilise une quantité de ligand(s) agoniste (s) de PPARy en concentration dans le milieu infecté au moins suffisante pour induire et/ou amplifier l'expression des récepteurs mannose des macrophages présents