Brevet FR2855758A1 — publié le 20041210

La présente invention concerne le domaine de la vaccination prophylactique et thérapeutique dirigée contre le virus de l'hépatite C (VHC). Elle a notamment pour objet une nouvelle composition contenant une polyprotéine correspondant aux deux protéines colinéaires NS3 et NS4 (appelée ci-après polyprotéine NS3/NS4) et un polypeptide constitué de NS5b, les vecteurs, tels qu'adénovirus ou poxvirus, capables d'exprimer cette composition et leur utilisation en tant que vaccin. L'hépatite C est la cause principale des hépatites acquises par transfusion. L'hépatite C peut également être transmise par d'autres voies percutanées, par exemple par injection de drogues par voie intraveineuse. Le risque de contamination des professionnels de la santé n'est par ailleurs pas négligeable. La transmission sexuelle a été décrite. L'hépatite C se distingue des autres formes de maladies du foie associées à des virus, telles que les hépatites A, B ou D. Les infections par le virus de l'hépatite C (VHC ou HCV) sont majoritairement chroniques avec pour résultante des maladies du foie, telles que hépatite, cirrhose et carcinome dans un grand nombre de cas (5 à 20%) et représentent dans les pays développés 30% des transplantations hépatiques. Bien que le risque de transmission du virus par transfusion ait diminué du fait de la mise en place de tests de criblage dans les années 1990, la fréquence de nouvelles infections par le VHC reste élevée. A titre d'exemple, une étude récente indique qu'il y aurait encore aujourd'hui 10 000 à 15 000 nouveaux cas d'infection par an en France (S. Deuffic et al., Hepatology 1999; 29 : 1596-1601). Actuellement, environ 170 millions de personnes à travers le monde sont infectées de manière chronique par le VHC (Hepatitis C : Global prevalence (update) , 2000, Weekly Epidemiological Record, Vol 75(3)). Les populations à risque élevé sont principalement le personnel hospitalier et les utilisateurs de drogues intraveineuses, mais il existe des donneurs de sang asymptomatiques qui n'appartiennent pas à ces groupes à risque élevé et chez lesquels des anticorps anti-VHC circulants ont été retrouvés. Pour ces derniers, la voie de l'infection n'a encore pas été identifiée. Il existe donc des infections à VHC (estimation entre 5 et 10%), dites infections sporadiques dont l'étiologie est inconnue et qui ne peuvent être contrôlées. Le VHC a été le premier virus hépatotrope isolé au moyen des techniques de biologie moléculaire. Les séquences du génome viral ont été clonées avant que la particule virale n'ait été visualisée. Le VHC appartient à un nouveau genre de la famille des Flaviviridae, les hepacivirus. C'est un virus à ARN simple brin positif, de 9,5 kb, qui se réplique par une copie d'ARN complémentaire et dont le produit de traduction est un précurseur polyprotéique d'environ 3 000 acides aminés. L'extrémité 5' du génome du VHC correspond à une région non traduite adjacente aux gènes qui codent pour les protéines structurales, la protéine core de la nucléocapside, les deux glycoprotéines d'enveloppe, El et E2, et une petite protéine appelée p7. La région non traduite 5' et le gène core sont relativement bien conservés dans les différents génotypes. Les protéines d'enveloppe El et E2 sont codées par des régions plus variables d'un isolat à un autre. La protéine p7 est une protéine extrêmement hydrophobe qui constituerait un canal ionique. L'extrémité 3' du génome du VHC contient les gènes qui codent pour les protéines non structurales (NS2, NS3, NS4, NS5) et pour une région 3' non codante possédant un domaine bien conservé (Major ME, Feinstone SM, Hepatology, juin 1997, 25 (6) : 1527-1538). A l'heure actuelle, la thérapie la plus efficace pour le traitement de l'hépatite C associe l'interféron pégylé et la ribavirine (Manns MP et al., The Lancet, 22 septembre 2001, Vol. 358,958-965). Alors que cette thérapie est particulièrement efficace dans le cas des patients infectés par des souches virales appartenant aux génotypes 2 et 3, elle n'a encore qu'un effet limité sur les génotypes la, lb et 4 (Manns MP, supra). Moins de 50% des patients traités deviennent des répondeurs au long terme . Par ailleurs, cette thérapie est une intervention coûteuse (10 000 à 15 000 euro/patient/an) et est associée à des effets toxiques. En effet, 5 à 10% des patients sont obligés d'interrompre le traitement avant la fin. Il est donc nécessaire de mettre au point une composition vaccinale ciblant tous les génotypes. Plusieurs études montrent aujourd'hui que le contrôle d'une infection due au VHC, soit naturellement ( résolution spontanée ), soit après traitement ( résolution thérapeutique ) est associé à l'induction ou la potentialisation de réponses immunes à médiation cellulaire faisant intervenir les lymphocytes T-CD4+ et T-CD8+ (comme décrit par exemple dans LECHNER, F. et al., Eur. J. Immunol., 30 : 2479-2487 (2000) et dans Thimme R. et al., 2001, J. Exp. Med., 194 (10) : Les molécules du complexe majeur d'histocompatibilité (CMH ou autrement appelé HLA chez l'homme) sont dites de classe 1 ou de classe II. Les molécules de classe 1 sont exprimées sur la quasi-totalité des cellules nucléées et sont capables de présenter des épitopes ou peptides aux de lymphocytes T cytotoxiques (CTL) CD8+. Les molécules de classe II sont capables de présenter des épitopes aux cellules T CD4+, mais leur expression est restreinte aux cellules présentatrices d'antigène. Les vaccins contre le virus de l'hépatite C actuellement envisagés sont basés sur l'utilisation de protéines recombinantes adjuvantées, de peptides, de vecteurs d'expression parmi lesquels on peut citer les vecteurs d'origine virale ou bactérienne ou d'ADN nu. Dans ce cas, une ou plusieurs protéines virales ou un ou plusieurs gènes codant pour ces protéines virales sont utilisés. Lorsque plusieurs protéines virales ou un ou plusieurs gènes codant pour ces protéines virales sont sélectionnés, ceux-ci sont souvent constitués soit par une partie ou l'ensemble des protéines structurales (Makimura et al., 1996, Vaccine, 14 : 28-34 ; Foumillier A., et al, 1999, J. Virology, 73 : soit par les protéines non structurales individuelles ou comprenant au moins deux protéines contiguës (Brinster et al., 2001, Hepatology, 34 : 1206-1217), soit par un mélange de protéines structurales et non structurales (Pancholi et al., 2003, J. Virology, 77 :382-390). La demande de brevet W099/3880 décrit l'utilisation de trois gènes codant séparément pour les trois protéines NS3, NS4 et NS5 (a et b) dans une composition vaccinale comprenant trois vaccins ADN exprimant chacun séparément ces trois protéines. Les auteurs montrent chez la souris l'induction de lymphocytes T spécifiques des trois antigènes. Seul le vaccin exprimant NS5a et b a été testé in vivo dans un test de protection. La demande de brevet W001/30812 décrit quant à elle l'utilisation d'une protéine de fusion constituée des protéines non structurales NS3, NS4 et NS5a, le cas échéant en association avec la protéine non structurale NS5b. Les auteurs ont indiqué que cette association permettait d'activer les cellules T spécifiques de VHC. Cette demande de brevet décrit simplement la capacité de formulations vaccinales (type ADN nu, adénovirus recombinant ou virus de la vaccine recombinant) exprimant la protéine de fusion NS3 NS4 NS5a ou la protéine NS5a à induire des réponses immunitaires spécifiques et médiées par des lymphocytes T spécifiques. La Demanderesse a maintenant mis en évidence, contre toute attente, que l'association particulière des protéines non structurales NS3, NS4 et NS5b, NS3 et NS4 étant sous la forme d'une polyprotéine colinéaire, présentait un meilleur pouvoir immunogène et protecteur supérieur à celui obtenu avec un vaccin incluant, outre ces protéines non structurales, également la protéine NS5a et/ou d'autres protéines structurales du VHC telles que core, El ou E2, et avait un effet sur la capacité des cellules provenant de patients infectés par des souches virales à induire des réponses immunitaires spécifiques. Ainsi, la présente invention a pour objet une composition peptidique comprenant une polyprotéine NS3/NS4 du virus de l'hépatite C, ainsi qu'un polypeptide NS5b du virus de l'hépatite C. Elle a également pour objet, les vecteurs incluant les séquences nucléotidiques codant pour cette composition peptidique, tels que les adénovirus et les poxvirus, ainsi que les microorganismes ou cellules hôtes transformés par ces vecteurs. Elle a enfin pour objet les anticorps dirigés contre la composition peptidique de l'invention, ainsi que l'utilisation de la composition peptidique, des vecteurs et des anticorps pour la préparation d'un médicament destiné à l'inhibition ou le contrôle d'une infection provoquée par le virus de l'hépatite C, et dans une composition vaccinale. La présente invention propose donc une nouvelle composition peptidique constituée d'une polyprotéine NS3/NS4 et d'un polypeptide NS5b du VHC, laquelle composition a la capacité de stimuler une réponse immunitaire à médiation cellulaire spécifique du VHC, de sorte qu'elle est utile dans le domaine de la vaccination prophylactique et thérapeutique dirigée contre le virus de l'hépatite C. La polyprotéine NS3/NS4 de la composition peptidique de l'invention est constituée de la protéine NS3 et de la protéine NS4a et b, sans interruption dans la séquence peptidique, comme dans la polyprotéine native. En effet, comme indiqué précédemment, le génome du VHC contient un seul cadre de lecture ouvert qui est transcrit en une polyprotéine. Cette polyprotéine du VHC peut être clivée pour produire au moins dix parties distinctes, dans l'ordre NH2-Core-E1-E2-p7-NS2-NS3-NS4a- NS4b-NS5a-NS5b-COOH, La protéine NS3 est une protéine de 630 acides aminés qui apparaît approximativement de l'acide aminé 1027 à l'acide aminé 1657 de la polyprotéine. La protéine NS4, protéine de 314 acides aminés, quant à elle apparaît approximativement de l'acide aminé 1658 à l'acide aminé 1972 (numérotation par rapport au VHC-1) (Choo et al., 1991, Proc. Natl. Acad. Sci., vol 88 :2451-2455). polyprotéine NS3/NS4 apparaît donc approximativement de l'acide aminé 1027 à l'acide aminé 1972. S'agissant du polypeptide NS5b également contenu dans la composition de l'invention, il est constitué de 590 acides aminés et apparaît approximativement de l'acide aminé 2421 à l'acide aminé 3011de la polyprotéine (Choo et al., 1991, supra). La protéine NS3 comprend deux domaines structuraux distincts, à savoir un domaine N-terminal doté d'une activité protéasique à sérine active intervenant dans la maturation de la polyprotéine virale et un domaine C-terminal comprenant une activité hélicase associée à une activité NTPasique qui joue un rôle dans la réplication du génome viral. Par polyprotéine NS3/NS4 et polypeptide NS5b , on entend bien entendu les polyprotéines et polypeptides ayant les séquences en acides aminés natives, provenant de toute souche et isolat du VHC, ainsi que leurs analogues, mutéines et homologues. Par analogues ou mutéines de la polyprotéine et du polypeptide, on entend les dérivés biologiquement actifs des molécules de référence qui présentent l'activité souhaitée, à savoir la capacité à stimuler une réponse immunitaire à médiation cellulaire comme défini ci-dessus. De façon générale, le terme analogue se réfère à des composés ayant une séquence et une structure polypeptidique native présentant une ou plusieurs additions, substitutions (généralement conservatrice en termes de nature) et/ou délétions d'acide aminé, par rapport à la molécule native, dans la mesure où les modifications ne détruisent pas l'activité immunogène. Par le terme mutéine , on entend les peptides présentant un ou plusieurs éléments imitant le peptide ( peptoïdes ), tels que ceux décrits dans la demande de brevet PCT W091/04282. De préférence, l'analogue ou la mutéine ont au moins la même immunoactivité que la molécule native. Des procédés de préparation d'analogues et mutéines polypeptidiques sont connus de l'homme du métier et sont décrits ci-dessous. Les analogues particulièrement préférés incluent les substitutions conservatrices en nature, c'est-à-dire les substitutions qui prennent place dans une famille d'acides aminés. Spécifiquement, les acides aminés sont généralement divisés en 4 familles, à savoir (1) les acides aminés acides tels que l'aspartate et le glutamate, (2) les acides aminés basiques tels que la lysine, l'arginine et l'histidine, (3) les acides aminés non polaires tels que l'alanine, la leucine, l'isoleucine, la proline, la phénylalanine, la méthionine et le tryptophane et (4) les acides aminés non chargés polaires tels que la glycine, l'asparagine, la glutamine, la cystéine, la sérine, la thréonine et la tyrosine. La phénylalanine, le tryptophane et la tyrosine sont parfois classés en acides aminés aromatiques. Par exemple, on peut prédire de façon raisonnable qu'un remplacement isolé de leucine par de l'isoleucine ou de la valine, d'un aspartate par un glutamate, d'une thréonine par une sérine, ou un remplacement conservateur similaire d'un acide aminé par un autre acide aminé ayant un rapport structurel, n'aura pas d'effet majeur sur l'activité biologique. L'homme du métier déterminera facilement les régions de la molécule peptidique d'intérêt qui peuvent tolérer un changement par référence à aux plots Hopp/Woods et Kyte-Doolite, biens connus dans la technique. Par homologie , on entend le pourcentage d'identité entre deux molécules peptidiques, telles que polyprotéines et polypeptides. Deux séquences d'acides aminés sont sensiblement homologues l'une par rapport à l'autre lorsque les séquences présentent au moins 60%, de préférence au moins 75%, de préférence encore au moins 80-85%, de préférence encore au moins 90% et d'avantage préféré au moins 95-98% ou plus d'identité de séquence sur une longueur définie des molécules peptidiques. De manière générale, le terme identité se réfère à une correspondance exacte acide aminé par acide aminé de deux séquences peptidiques. Le pourcentage d'identité peut être déterminé par une comparaison directe de l'information de séquence entre deux molécules en alignant les séquences, en comptant le nombre exact de mésappariements entre les deux séquences alignées, en divisant par la longueur de la séquence la plus courte et en multipliant le résultat par 100. Le pourcentage d'identité peut également être déterminé à l'aide de programmes d'ordinateurs tels que ALIGN, Dayhoff, M. O. dans Atlas of Protein Sequence and Structure M.O. Dayhoff ed., 1981, 5 Suppl., 3 :482-489. Les séquences d'acide nucléique et en acides aminés d'un certains nombre de souches et isolats du VHC, et en particulier de la protéine NS3, de la protéine NS4 et du polypeptide NS5b, ont déjà été déterminées. Par exemple, l'isolat HCV-J1 est décrit dans Okamoto H. et al., 1992, Nucleic Acids Res., 20: 6410-6410. Les séquences codantes complètes de deux isolats indépendants du VHC, à savoir les isolats HCV-J et-BK, ont été décrits respectivement dans Kato et al., 1990, Proc. Natl. Acda., Sci., 87 : 9524-9528 et dans Takamizawa et al., 1991, J. Virol., 65 : 1105-1113. S'agissant de l'isolat HCV-1, il est décrit dans Choo et al., 1990, Brit. Med. Bull., 46 : 423-441 et dans Choo et al., 1991, supra. L'isolat HVC-H a été décrit dans Inchauspé G. et al ;, 1991, Proc. Natl. Acad. Sci., 88 : 10292-10296. L'isolat HCV-G9 a été décrit dans Okamoto H., et al., 1994, J. Gen. Virol., 45 : Les isolats HCV-J6 et-J8 ont été décrits respectivement dans Okamoto H., et al., 1991, J. Gen. Virol., 72 : 2697-2704 et Okamoto H., et al., 1992, Virology, 188 : 331-341. L'isolat HVC-BEBE1 a été décrit dans Nako H., et al., 1996, J. Gen. Virol., 141 : et l'isolat HCV-NZL1 a été décrit dans Sakamoto M., et al., 1994, J. Gen. Virol., 75 : 1761-1768. S'agissant de l'isolat HCV-Tr, il a été décrit dans Chayama K., et al., 1994, J. Gen. Virol., 75 : Les isolats HCV-ED43 et-EUH1480 ont été décrits respectivement dans Chamberlain R. W., et al., 1997, J. Gen. Virol., 78 : 1341-1347 et Chamberlain R. W., et al., 1997, Biochem. Biophys. Res. Commun., 236 : 44-49. L'isolat HCV-EUHK2 a été décrit dans Adams A., et al., 1997, Biochem. Biophys. Res. Commun., 234 : 393-396. Les isolats HCV-VN235,-VN405 et -VN004 ont été décrits dans Tokita H., et al., 1998, J. Gen. Virol., 79 : 1847. Enfin, s'agissant des isolats HCV-JK049 et-JK046, ils ont été décrits dans Tokita H. et al., 1996, J. Gen. Virol., 77 : 293-301. Les souches et isolats du VHC, tel qu'illustrés ci-dessus, peuvent présenter des génotypes différents, à savoir des génotypes la (isolats HCV-1, -Jl et-H), lb (isolats HCV-J et BK), le (isolat HCV-G9), 2a (isolat HCV-J6), 2b (isolat HCV-J8), 2c (isolat HCV-BEBE1), 3a (isolat HCV-NZL1), 3b (isolat HCV-Tr), 4a (isolat HCV-ED43), 5a (isolat HCV-EUH1480), 6a (isolat HCV-EUHK2), 7b (isolat HCV-VN235), 8b (isolat HCV-VN405), 9a (isolat HCV-VN004), 10a (isolat HCV-JK049) et 1 la (isolat HCVJK046). Selon un mode de réalisation de l'invention, NS3 et/ou NS4 et/ou NS5b proviennent de virus de génotypes différents. Selon un autre mode de réalisation, NS3 et/ou NS4 et/ou NS5b proviennent de virus de même génotype, de préférence de génotype lb. La polyprotéine NS3/NS4 et le polypeptide NS5b contenus dans la composition peptidique de l'invention peuvent être soit d'origine native, soit d'origine recombinante. La polyprotéine NS3/NS4 et le polypeptide NS5b d'origine native sont obtenus à partir des souches ou isolats du VHC, par le biais de l'utilisation d'amorces oligonucléotidiques synthétiques qui vont servir à amplifier les séquences virales natives, soit à partir de sera de patients infectés par le ou les génotypes viraux ciblés, soit à partir d'ARN viral déjà purifié, provenant par exemple de sang ou de foie de patients, soit à partir d'ADN complémentaire libre ou cloné au préalable dans un vecteur d'expression, soit encore à partir de particules virales purifiées à partir de prélèvements biologiques ou de système de propagation in vitro. La polyprotéine NS3/NS4 et le polypeptide NS5b de l'invention d'origine recombinante peuvent également être obtenus par la technique du génie génétique qui comprend les étapes de : - culture d'un microorganisme ou de cellules eucaryotes transformé(es) à l'aide d'une séquence nucléotidique codant pour ladite polyprotéine NS3/NS4 ou pour ledit polypeptide NS5b et - récupération du peptide produit par ledit microorganisme ou lesdites cellules eucaryotes. Cette technique est bien connue de l'homme du métier. Pour plus de détails la concernant, on pourra se référer à l'ouvrage ci-après : Recombinant DNA Technology I, Editors Ales Prokop, Raskesh K Bajpai ; Annals of the New-York Academy of Sciences, Volume 646, 1991. Les séquences nucléotidiques codant pour la polyprotéine NS3/NS4 et le polypeptide NS5b peuvent être préparées par synthèse chimique couplée à une approche de génie génétique ou par génie génétique seul, en utilisant les techniques bien connues de l'homme du métier et décrites par exemple dans Sambrook J. et al., Molecular Cloning : A Laboratory Manual, 1989. Les séquences nucléotidiques codant pour la polyprotéine NS3/NS4 et le polypeptide NS5b peuvent être insérées dans des vecteurs d'expression dans un système d'expression adapté, afin d'obtenir la composition peptidique de l'invention. Ainsi, un autre objet de l'invention consiste en les vecteurs d'expression comprenant une séquence nucléotidique codant pour la polyprotéine NS3/NS4 et une séquence nucléotidique codant pour le polypeptide NS5b,, ainsi que les moyens nécessaires à son expression. On entend par moyen nécessaire à l'expression d'un peptide, le terme peptide étant utilisé pour toute molécule peptidique, telle que protéine, polyprotéine, polypeptide, etc., tout moyen qui permet d'obtenir le peptide, tel que notamment un promoteur, un terminateur de transcription, une origine de réplication et de préférence un marqueur de sélection. Les moyens nécessaires à l'expression d'un peptide sont liés de façon opérationnelle à la séquence d'acide nucléique codant pour le peptide d'intérêt. Par liés de façon opérationnelle , on entend une juxtaposition desdits éléments nécessaires à l'expression et du gène codant pour le peptide d'intérêt, lesquels sont en une relation telle que cela leur permet de fonctionner de façon attendue. Par exemple, ils peut exister des bases supplémentaires entre le promoteur et le gène d'intérêt tant que leur relation fonctionnelle est préservée. Les moyens nécessaires à l'expression d'un peptide peuvent être des moyens homologues, c'est-à-dire inclus dans le génome du vecteur utilisé, ou bien être hétérologues. Dans ce dernier cas, lesdits moyens sont clonés avec le peptide d'intérêt à exprimer. Des exemples de promoteurs hétérologues comprennent (i) les promoteurs viraux tels que le promoteur SV40 (Virus simien 40), le promoteur du gène de la thimidine-kinase du virus simplex de l'Herpès (TK-HSV-1), le LTR du virus du sarcome de Rous (RSV), le promoteur premier immédiat du cytomégolovirus (CMV) et le promoteur dernier majeur adénoviral (MLP), ainsi que (ii) tout promoteur cellulaire qui contrôle la transcription des gènes codant pour des peptides chez des eucaryotes supérieurs, tel que le promoteur du gène de phosphoglycérate-kinase (PGK) constitutif (Adra et al., 1987, Gene, 60 : 65-74), le promoteur des gènes spécifiques du foie alphal-antitrypsine et FIX et le promoteur SM22 spécifique des cellules du muscle lisse (Moessler et al., 1996, Development, 122 : 2415-2425) Selon un mode de réalisation de l'invention, les séquences nucléotidiques codant pour ladite polyprotéine NS3/NS4 et ledit polypeptide NS5b sont issus de génotypes différents. Selon un autre mode de réalisation, les séquences nucléotidiques codant pour ladite polyprotéine et ledit polypeptide sont issus d'un virus de même génotype, de préférence le génotype lb. Là encore, on entend par séquence nucléotidique , toutes les séquences codant pour la polyprotéine NS3/NS4 et le polypeptide NS5b natifs, ainsi que pour leurs analogues, mutéines et homologues, tels que définis précédemment. Lesdites séquences contenues dans le vecteur d'expression peuvent être liées directement entre elles sous le contrôle d'un seul promoteur et/ou d'un seul élément régulateur de l'expression, ou bien elles peuvent être séparées en étant sous la dépendance chacune de promoteurs et/ou régulateurs de l' expression indépendants, identiques ou différents. A titre de vecteur d'expression qui conviennent aux fins de l'invention, on peut citer par exemple les plasmides, les vecteurs viraux type adenovirus, poxvirus, virus de la vaccine, baculovirus, les vecteurs bactériens du type salmonelle, BCG. Les adénovirus ont été détectés dans de nombreuses espèces animales, ne s'intègrent pas et sont peu pathogènes. Ils sont capables d'infecter une variété de types cellulaires, les cellules en division et les cellules en repos. Ils possèdent un tropisme naturel pour les épithéliums bronchiques. De plus, ils ont été utilisés en tant que vaccins entériques vivants pendant de nombreuses années avec un excellent profile de sécurité. Enfin, on peut les faire pousser facilement et les purifiées en grande quantité. Ces caractéristiques ont fait que les adénovirus sont particulièrement appropriés pour une utilisation en tant que vecteurs d'expression et notamment en tant vecteurs de thérapie génique à des fins thérapeutiques et vaccinales. Selon un mode de réalisation préféré, le vecteur de l'invention est un adénovirus. Des exemples d'adénovirus à utiliser dans la présente invention peuvent être dérivés de toute source d'origine humaine ou animale, en particulier d'origine canine (par exemple CAV-1 ou CAV-2 ; référence Genbank CAV1GENOM et CAV77082, respectivement), d'origina avienne (référence Genbank AAVEDSDNA), d'origine bovine (telle que BAV3, Seshidhar Reddy et al., 1998, J. Virol., 72 : 1394-1402), d'origine ovine, féline, porcine, d'origine simienne, ou bien d'un de leurs hybrides. Tout sérotype peut être utilisé. Toutefois, les adénovirus d'origine humaine sont préférés et en particulier l'adénovirus 5 (AdIV). De façon générale, les virus cités sont disponibles dans les collections ATCC et ont fait l'objet de nombreuses publications décrivant leur séquence, leur organisation et leur biologie, ce qui permet à l'homme du métier de les appliquer facilement. Par exemple, la séquence de l'adénovirus type 5 est décrite dans la base de donnée Genbank (M73260 et M29978) et est incorporée ici par référence. Le génome des adénovirus est constitué d'une molécule d'ADN linéaire double brin d'environ 36 kb portant plus d'environ 30 gènes nécessaires pour terminer le cycle viral. Les premiers gènes sont divisés en 4 régions dispersées dans le génome de l'adénovirus (El à E4). Les régions El, E2 et E4 sont essentielles pour la réplication virale. La région E3 est considérée comme une région non essentielle sur la base de l'observation que les virus mutants apparaissant naturellement ou les virus hybrides ayant perdu cette région E3 continuent à se répliquer comme les virus de type sauvage dans les cellules cultivées (Kelly et Lewis, 1973, J. Virol., 12:643-652). Les derniers gènes (L1 à L5) codent en majorité pour les protéines structurales constituant la capside virale. Ils chevauchent au moins en partie les premiers motifs de transcription et sont transcrits à partir d'un promoteur unique (MLP pour Major Late Promoter ). De plus, le génome adénoviral porte aux deux extrémités des régions à action en cis essentielles pour la réplication d'ADN, respectivement les motifs de répétition inversés 5' et 3' (ITRs pour Inverted Terminal Repeats ) et une séquence d'empaquetage. Les adénovirus actuellement utilisés dans les protocoles de thérapie génique sont dénués de la majorité de la région El, ce qui rend les virus déficients au niveau de leur réplication pour éviter leur dissémination dans l'environnement et dans l'organisme hôte. En outre, la plupart des adénovirus sont également dénués de la région E3 afin d'accroître leur capacité de clonage. La faisabilité du transfert de gène en utilisant ces vecteurs a été démontrée dans une variété de tissus in vivo (voir par exemple Yei et al., 1994, Hum. Gene Ther., 5 : 731-744 ; Dai et al., 1995, Proc. Natl. Acad Sci. USA, 92: 1401-1405 ; US6,099,831 ; et US6,013,638). De préférence, les promoteurs utilisés dans les adénovirus comme vecteur d'expression, sont des promoteurs hétérologues tels que les promoteurs le CMV et le SV40. De préférence encore, le promoteur CMV est le promoteur de la polyprotéine NS3/NS4 et le vecteur d'expression comprend comme séquence nucléotidique codant pour ladite polyprotéine la cassette d'expression CMV-NS3-NS4. Par cassette d'expression , on entend une séquence d'ADN contenant un promoteur et un cadre de lecture ouvert pour l'expression du peptide d'intérêt, à insérer dans un vecteur. De préférence également, le promoteur SV40 est le promoteur du polypeptide NS5b et le vecteur d'expression comprend comme séquence nucléotidique codant pour ledit polypeptide la cassette d'expression SV40-NS5b. Selon un mode de réalisation de l'invention, le génome de l'adénovirus est modifié de façon à remplacer la région El par la cassette d'expression CMV-NS3-NS4 et à remplacer la région E3 par la cassette d'expression SV40-NS5b. Les méthodes de suppression et d'insertion de séquences d'ADN dans des vecteurs d'expression sont largement connues de l'homme du métier et consistent notamment en des étapes de digestion enzymatique et ligature. Un autre vecteur d'expression particulièrement approprié aux fins de l'invention est un poxvirus, lequel constitue un autre mode de réalisation de l'invention. Les poxvirus constituent un groupe de virus complexe enveloppés, se distinguant principalement par leur morphologie inhabituelle, leur grand génome d'ADN et leur site cytoplasmique de réplication. Le génome de plusieurs éléments des poxviridae, comprenant la souche virale de la vaccine de Copenhagen (W) (Goebel et al., 1990, Virol. 179 : et 517-563) et la souche du virus de la vaccine modifié d'Ankara (MVA) (Antoine et al., 1998, Virol., 244 : 635-396), a été cartographie et séquence. La souche W possède un génome d'ADN double brin d'environ 192 kb codant pour environ 200 protéines dont approximativement 100 sont impliquées dans l'assemblage du virus. La souche MVA est une souche du virus de la vaccine hautement atténuée, générée par plus de 500 passages en série de la souche d'Ankara du virus de la vaccine (CVA) sur des fibroblastes d'embryons de poulet (Mayr et al., 1975, Infection, 3 : Le virus MVA a été déposé devant la Collection Nationale de Cultures de Microorganismes (CNCM) sous le numéro 1-721. La détermination de la séquence complète du génome du MVA et la comparaison avec celui du W permet l'identification précise des altérations qui sont apparues dans le génome viral et la définition de sept délétions (I à VII) et de nombreuses mutations conduisant à des cadres de lecture ouverts fragmentés (Antoine et al., 1998, Virology, 244 : D'autres exemples de poxvirus appropriés aux fins de l'invention comprennent le pox du canari, le pox de volaille, le pox de vache, l'entomopox, le pox de singe, le pox de porc et le pox de pingouin. Le poxvirus se trouve sous deux formes morphologiquement distinctes, appelées virus mature intracellulaire (IMV) et virus extracellulaire enveloppé (EEV). Le poxvirus utilisé comme vecteur d'expression de l'invention présente au moins l'une des caractéristiques suivantes, prises seules ou en association : (i) le poxvirus est un virus MVA, (ii) le poxvirus est sous forme morphologique IMV, et (iii) le génome du poxvirus est modifié de façon à insérer la cassette d'expression NS3/NS4 et à insérer la cassette d'expression NS5b. Lorsque le génome du poxivirus est modifié de façon à insérer les deux cassettes d'intérêt, les moyens nécessaires à leur expression sont homologues. Ainsi, dans le cas où on utilise le virus MVA, la cassette NS3/NS4 peut être par exemple sous le contrôle du promoteur ph5r et la cassette NS5b peut être par exemple sous le contrôle du promoteur p7.5 et vice et versa. Selon un mode de réalisation particulier, lorsque le génome du poxivirus est modifié de façon à insérer les deux cassettes d'intérêt, les deux dites cassettes d'expression sont orientées dans le même sens. Selon un autre mode de réalisation particulier, elles sont orientées en sens opposé. Là encore, les cassettes d'expression sont insérées dans le génome du poxvirus de façon connue par l'homme du métier, comme indiqué précédemment. Les vecteurs de l'invention peuvent également comprendre des séquences nécessaires au ciblage des peptides vers des compartiments cellulaires particuliers. Un exemple de ciblage peut être le ciblage vers le réticulum endoplasmique obtenu en utilisant des séquences d'adressage du type de la séquence leader issue de la protéine E3 de l'adénovirus (Ciernik I.F., et al., The Journal of Immunology, 1999,162, 3915- 3925). Ils peuvent également comprendre des séquences nécessaires au ciblage vers les cellules dendritiques et au ciblage à la membrane des cellules. L'invention a également pour objet les microorganismes et les cellules eucaryotes transformés par un vecteur d'expression de l'invention. A titre d'exemples de microorganisme qui conviennent aux fins de l'invention, on peut citer les levures, telles que celles des familles suivantes : Saccharomyces, Schizosaccharomyces, Kluveromyces, Pichia, Hanseluna, Yarowia, Schwaniomyces, Zygosaccharomyces, Saccharomyces cerevisiae, Saccharomyces carlsbergensis et Kluveromyces lactis étant préférées ; et les bactéries, telles que E. coli et celles des familles suivantes : Lactobacillus, Lactococcus, Salmonella, Strptococcus, Bacillus et Streptomyces. A titre d'exemples de cellules eucaryotes, on peut citer les cellules provenant d'animaux tels que les mammifères, les reptiles, les insectes et équivalent. Les cellules eucaryotes préférées sont les cellules provenant du hamster chinois (cellules CHO), du singe (cellules COS et Vero), du rein de hamster nain (cellules BHK), du rein de cochon (cellules PK 15) et du rein de lapin (cellules RK13, les lignées cellulaires humaines de l'ostéosacorme (cellules 143 B), les lignées cellulaires humaines HeLa et les lignées cellulaires humaines de l'hépatome (du type cellules Hep G2), ainsi que les lignées cellulaires d'insecte (par exemple de Spodoptera frugiperda). Les cellules hôtes peuvent être fournies dans des cultures en suspension ou en flacon, dans des cultures tissulaires, des cultures d'organe et équivalent. Les cellules hôtes peuvent également être des animaux transgéniques. L'invention concerne également des anticorps dirigés contre l'une des compositions peptidiques de l'invention telles que définies précédemment ou bien contre l'un des vecteurs d'expression de l'invention tels que définis précédemment. Les anticorps selon l'invention sont soit des anticorps polyclonaux, soit monoclonaux. Les anticorps polyclonaux susmentionnés peuvent être obtenus par immunisation d'un animal avec la composition peptidique de l'invention ou bien avec le vecteur de l'invention à titre d'antigène d'intérêt , suivie de la récupération des anticorps recherchés sous forme purifiée, par prélèvement du sérum dudit animal, et séparation desdits anticorps des autres constituants du sérum, notamment par chromatographie d'affinité sur une colonne sur laquelle est fixée un antigène spécifiquement reconnu par les anticorps, notamment un antigène viral d'intérêt. Les anticorps monoclonaux peuvent être obtenus par la technique des hybridomes dont le principe général est rappelé ci-après. Dans un premier temps, on immunise un animal, généralement une souris, (ou des cellules en culture dans le cadre d'immunisations in vitro) avec la composition peptidique de l'invention ou bien avec le vecteur de l'invention à titre d'antigène d'intérêt , dont les lymphocytes B sont alors capables de produire des anticorps contre ledit antigène. Ces lymphocytes producteurs d'anticorps sont ensuite fusionnés avec des cellules myélomateuses "immortelles" (murines dans l'exemple) pour donner lieu à des hybridomes. A partir du mélange hétérogène des cellules ainsi obtenu, on effectue alors une sélection des cellules capables de produire un anticorps particulier et de se multiplier indéfiniment. Chaque hybridome est multiplié sous la forme de clone, chacun conduisant à la production d'un anticorps monoclonal dont les propriétés de reconnaissance vis-à-vis de l'antigène d'intérêt pourront être testées par exemple en ELISA, par immunotransfert en une ou deux dimensions, en immunofluorescence, ou à l'aide d'un biocapteur. Les anticorps monoclonaux ainsi sélectionnés, sont par la suite purifiés notamment selon la technique de chromatographie d'affinité décrite ci-dessus. Les compositions peptidiques, les vecteurs et les anticorps de l'invention sont particulièrement efficaces pour l'inhibition, la prévention et le contrôle de l'infection des patients porteurs du virus du VHC, de sorte que leur utilisation pour la préparation d'un médicament constitue un autre objet de l'invention. La présente invention concerne également une composition pharmaceutique, notamment vaccin, contenant à titre de substance active la composition peptidique de l'invention, ou bien un vecteur d'expression de l'invention, ou bien les séquences nucléotidiques codant pour ladite polyprotéine NS3/NS4 et ledit polypeptide NS5b correspondant aux séquences contenues dans les vecteurs d'expression de l'invention, placées sous le contrôle d'éléments nécessaires à une expression constitutive et/ou inductible desdits peptides, ou bien l'un au moins des anticorps de l'invention. Par éléments nécessaires à une expression constitutive des peptides, on entend un promoteur ubiquitaire ou spécifique des cellules eucaryotes. A titre d'éléments nécessaires à une expression inductible des peptides, on peut citer les éléments de régulation de l'opéron de E. coli pour la résistance à la tétracycline (Gossen M. et al, Proc Natl Acad Sci USA, 89 : 5547-5551 (1992). Selon un mode de réalisation particulier de l'invention, la composition pharmaceutique contient également un véhicule pharmaceutiquement approprié. Bien entendu, l'homme du métier déterminera facilement la nature du véhicule pharmaceutiquement approprié et la quantité de polypeptides à utiliser en fonction des constituants de la composition pharmaceutique. Les compositions pharmaceutiques de l'invention contiennent de préférence à titre de substance active un des vecteurs de l'invention, de sorte qu'elles sont utiles en vaccination prophylactique et thérapeutique. La vaccination prophylactique et thérapeutique peut être mise en #uvre par injection d'un vaccin à base d'un vecteur d'expression de l'invention, injection suivie de rappels ou non. Elle peut également être mise en #uvre en injectant deux types de vecteurs d'expression de l'invention différents, tout d'abord un adénovirus, puis un poxvirus, de façon simultanée ou différée dans le temps, et vice et versa. Ces vecteurs peuvent être contenus dans un kit pharmaceutique. Aussi un autre objet de l'invention consiste en des kits pharmaceutiques, notamment vaccinaux, comprenant un vecteur d'expression de type adénovirus tel que défini précédemment et/ou un vecteur d'expression de type poxvirus tel que défini précédemment. La vaccination prophylactique et thérapeutique peut également être mise en #uvre par injection d'un vaccin à base d'au moins un vecteur d'expression de l'invention et d'au moins une composition pharmaceutique de l'invention constituée de la composition peptidique de l'invention ou des anticorps de l'invention. Elle peut également être mise en #uvre par injection d'un vaccin à base d'au moins un vecteur d'expression de l'invention et d'au moins une séquence nucléotidique codant pour la polyprotéine NS3/NS4 et pour le polypeptide NS5b. Aussi, un autre objet de l'invention consiste en des kits pharmaceutiques, notamment vaccinaux, comprenant au moins un vecteur d'expression de l'invention et au moins une composition pharmaceutique de l'invention ou d'au moins une séquence nucléotidique codant pour la polyprotéine NS3/NS4 et pour le polypeptide NS5b. La présente invention sera mieux comprise à l'aide des exemples suivants donnés uniquement à titre illustratif et non limitatif, ainsi qu'à l'aide des figures 1 à 6 annexées, sur lesquelles : la figure lA à 1K représente les cartes des différents plasmides utilisés pour l'obtention d'un adénovirus AdNS3NS4NS5b selon l'invention, sur lesquelles sont indiqués les sites des différentes enzymes de restriction et l'emplacement des fragments de séquence codant pour NS3/NS4 et pour NS5b, la figure 2A à 2H représente les cartes des différents plasmides utilisés pour l'obtention d'un poxvirus MAV NS3NS4NS5b selon l'invention, sur lesquelles sont indiqués les sites des différentes enzymes de restriction et l'emplacement des fragments de séquence codant pour NS3/NS4 et pour NS5b, la figure 3 donne la réponse cellulaire induite par l'adénovirus AdNS3NS4, soit selon le test CTL (figure 3A) où on a utilisé l'épitope GLL pour stimuler les splénocytes en culture et pour charger les cibles du CTL et dont le résultat est exprimé en pourcentage de lyse spécifique en fonction du rapport effecteur/cible, soit selon le test ELISPOT (figure 3B), spécifique pour l'épitope GLL, où le résultat est donné en nombre de spots/106 cellules, la figure 4 donne la réponse cellulaire induite par l'adénovirus AdNS5b selon le test ELISPOT, spécifique des épitopes ALY et KLP, la figure 5 donne la réponse cellulaire induite par l'adénovirus AdCElE2 selon le test CTL où on a utilisé l'épitope DLM pour stimuler les splénocytes en culture et pour charger les cibles du CTL et dont le résultat est exprimé en pourcentage de lyse spécifique en fonction du rapport effecteur/cible et la figure 6 donne le titre de virus recombinant de la vaccine, résultant du test d'épreuve, en pfu/ml/mg ovaire, pour les 4 groupes de 8 souris immunisées par les différentes combinaisons d'adénovirus : AdNS3NS4 + AdNS5b (1 er groupe), les adénovirus AdNS3NS4 + AdNS5b + AdNS5a (2ème groupe), les adénovirus AdNS3NS4 + AdNS5b +AdCElE2 (3ème groupe) et l'adénovirus AdpGal (4ème groupe). Exemple 1 : Préparation d'un adénovirus permettant l'expression des protéines NS3/NS4 et NS5b selon l'invention 1 Adénovirus Les adénovirus recombinants sont générés par transfection (CaP03) de la lignée de complémentation 293 (Graham, Smiley, et al. 1977) après linéarisation des génomes par Pacl. Les virus recombinants se propagent et sont amplifiés sur cette même lignée, et leur purification est réalisée à partir des cellules infectées. Les cellules sont récupérées par centrifugation (1500 tpm (tours par min), 10 min) et lysées par 3 cycles de congélation/décongélation. Le lysat cellulaire est clarifié par deux centrifugations (2000 tpm, 10 min; 8000 tpm, 15 min), puis purifié par deux ultracentrifugations successives. La première est réalisée sur un gradient de Chlorure de Césium (densités 1,4 et 1,25) à 30000 tpm pendant 1 heure. La seconde est réalisée sur un coussin de Chlorure de Césium (densité 1,34) à 35000 tpm pendant 18 heures. Les phases contenant les virions sont prélevées et diluées de moitié dans un tampon saccharose 60%. Les suspensions virales sont alors dialysées contre du tampon de formulation (pour 10 litres : 3423g de saccharose; 12,11g de Tris ; de MgCl2; 87,7g de NaCl), puis aliquotées. Leur titrage est réalisé par immunofluorescence indirecte sur cellules 293 infectées par différentes dilutions virales et marquées par un anticorps spécifique de la DNA-Binding Protein adénovirale (a72K B6-8) (Reich, Sarnow, et al. 1983). 2 Préparation de l'adénovirus AdNS3NS4 Cet adénovirus permet l'expression du gène codant pour la polyprotéine NS3/NS4 (SEQ ID N 1 et 2) sous le contrôle du promoteur CMV. 2. 1 Amplification par PCR de la séquence nucléotidique codant pour la polyprotéine NS3/NS4 Pour ce faire, on a utilisé les oligonucléotides suivants : oIV166: 5'-GGG GGG GCT ATG GCG CCT ATC ACG GCC TA-3' (SEQ ID N 9) oIV171: 5'-GGG GGG ACG CGT TTA GCA TGG CGT GGA GCA GT-3' (SEQ ID N 10) ainsi que les réactifs suivants : Taq DNA Polymérase, tampon PCR, MgCl2 l,5mM et dNTP lOmM (Invitrogen). Les conditions de PCR ont été les suivantes : 5 min à 94 C, puis 30 cycles de la série : 45 s à 94 C, 45 s à 62 C et 1 min à 72 C, puis 10minà72 C 2. 2 Insertion du fragment de PCR NS3/NS4 dans le plasmide de transfert pTG13387 On a effectué les étapes suivantes : - Digestion enzymatique du plasmide pTG13387 (figure lA, Transgène) par NheI/MluI (Nhel, Invitrogen dans React 4 Buffer et MluI, Invitrogen dans React 3 Buffer) - Digestion enzymatique du fragment NS3/NS4 par NheI/MluI - Ligature(T4 DNA Ligase (Invitrogen) dans Reaction Buffer (Invitrogen)), - Transformation bactérienne (souche 5K, Transgène) - Sélection des clones bactériens sur milieu LB (Difco) + ampicilline (lOOug/ml, Duchefa) - Maxi-préparation plasmidique (Qiagen, selon le protocole du fournisseur) d'un clone positif après analyse de restriction - Analyse de restriction : digestion par Smal (Invitrogen dans React 4 Buffer) et obtention de fragments de : 5450, 2164, 909,214 et 180 pb - Obtention du plasmide pIV315 délété de sa région El et contenant la séquence NS3/NS4 sous le contrôle du promoteur CMV (figure 1 B). 2. 3 Recombinaison homologue avec le génome adénoviral complet délété de sa région E3 contenu dans le plasmide pTG6624 On a effectué les étapes suivantes : - Digestion enzymatique du plasmide obtenu ci-dessus pIV315 par PacI/PvuI (PacI dans tampon NEB1, Biolabs et PvuI dans React 7 Buffer, Invitrogen); isolement sur gel d'agarose du fragment contenant la cassette pCMV-NS3-NS4 - Digestion enzymatique du plasmide pTG6624 (figure 1 C) par ClaI (dans React 1 Buffer, Invitrogen) - Transformation bactérienne (souche BJ, Transgène) pour effectuer la recombinaison homologue entre les deux fragments plasmidiques - Sélection des clones bactériens sur milieu LB + ampicilline (100 g/ml) - Maxi-préparation plasmidique (Qiagen) d'un clone positif après analyse de restriction - Analyse de restriction : digestion par Smal et obtention de fragments de : 2263,621, 3814, 214, 2164, 909, 180, 2463, 6480, 1398, 4456, 1455,3540, 3386,230 et 3685 pb - Obtention du génome adénoviral complet Adénovirus AdNS3NS4, délété de ses régions E3 et El, cette dernière ayant été remplacée par la cassette d'expression pCMVNS3-NS4 (pIV317, figure 1D). 3 Préparation de l'adénovirus AdNS3NS4NS5b Cet adénovirus permet l'expression du gène codant pour la polyprotéine NS3/NS4 sous le contrôle du promoteur CMV et l'expression du gène codant pour le polypeptide NS5b sous le contrôle du promoteur SV40 3. 1 Construction du plasmide de transfert permettant le clonage dans la région E3 de l'adénovirus d'une séquence codante sous le contrôle du promoteur CMV On a mis en #uvre les étapes suivantes : - Digestion enzymatique du plasmide pTG4664 (figure lE, Transgène) par Bglll (dans React 3 Buffer, Invitrogen) - Digestion enzymatique du plasmide pTG13074 (figure IF, Transgène) par BamHI/BglII (dans React 3 Buffer, Invitrogen) - Ligature (T4 DNA ligase), transformation bactérienne (souche 5K) - Sélection des clones bactériens sur milieu LB + ampicilline (100 ug/ml) - Maxi-préparation plasmidique (Qiagen) d'un clone positif après analyse de restriction - Analyse de restriction : digestion par Smal et obtention de fragments de : 4940,1305 et 230 pb - Obtention du plasmide pIV267 (figure 1 G) - Digestion du plasmide ainsi obtenu pIV267 par ClaI/MunI (dans React 1 Buffer, Invitrogen) - Traitement par la DNA Polymerase I, Large (Klenow) Fragment (dans React 2 Buffer, Invitrogen) - Ligature (T4 DNA Ligase) - Transformation bactérienne (souche 5K) - Sélection des clones bactériens sur milieu LB + ampicilline (100 g/ml) - Maxi-préparation plasmidique (Qiagen) - Analyse de restriction : digestion par Smal et obtention de fragments de : 1305 et 230 pb - Obtention du plasmide pIV270. plasmide de transfert permettant le clonage dans la région E3 de l'adénovirus d'une séquence codante sous le contrôle du promoteur CMV (figure 1H). 3. 2 Remplacement du promoteur CMV par le promoteur SV40 dans pIV270 On a effectué les étapes suivantes : - Amplification par PCR du fragment nucléotidique correspondant au promoteur SV40, à partir du plasmide commercial pcDNAHygro (Clonetech) grâce aux oligonucléotides suivants : - oIV232: 5'-GGG GGG AGA TCT CCA GCA GGC AGA AGT ATG-3' (SEQ ID N 11) - oIV233: 5'-GGG GGG GTC GAC CGA AAA TGG ATA TAC AAG CTC-3' (SEQIDN 12) et selon le mode opératoire décrit dans le point 2. 1 ci-dessus, à ceci près qu'on a utilisé une température de 58 C à la place de 62 C - Digestion enzymatique de pIV270 par BglII/SalI (dans React 10 Buffer, Invitrogen) - Digestion enzymatique du fragment de PCR par BglII/SalI - Ligature (T4 DNA ligase), transformation bactérienne (souche 5K) - Sélection des clones bactériens sur milieu LB + ampicilline (100 g/ml) - Maxi-préparation plasmidique (Qiagen) d'un clone positif après analyse de restriction - Analyse de restriction : digestion par SmaI et obtention de fragments de : 719, 80 et 230 pb - Obtention du plasmide pIV330, plasmide de transfert permettant le clonage dans la région E3 de l'adénovirus d'une séquence codante sous le contrôle du promoteur SV40 (figure 11). 3. 3 Insertion du fragment de PCR NS5b dans le plasmide de transfert pIV330 On a effectué les étapes suivantes : - Amplification par PCR de la séquence nucléotidique codant pour la protéine NS5b (SEQ ID N 3 et 4) grâce aux oligonucléotides suivants: - oIV212: 5'-GGG GGG TCT AGA ATG TCA ATG TCC TAC ACA TGG AC-3' (SEQ ID N 13) - oIV218: 5'-GGG GGG TCT AGA TTA CCG GTT GGG GAG CAG GT-3' (SEQ IDN 14) et selon le mode opératoire décrit dans le point 2. 1 ci-dessus, à ceci près qu'on a utilisé une température de 60 C à la place de 62 C - Digestion enzymatique du plasmide pIV330 obtenu ci-dessus par XbaI (dans React 2 Buffer, Invitrogen) - Digestion enzymatique du fragment de PCR par XbaI - Ligature (T4 DNA Ligase), transformation bactérienne (souche 5K) - Sélection des clones bactériens sur milieu LB + ampicilline (100 g/ml) - Maxi-préparation plasmidique (Qiagen) d'un clone positif après analyse de restriction - Analyse de restriction : digestion par SmaI et obtention de fragments de : 4692,1505, 760,719 et 230 pb - Obtention du plasmide pIV336, plasmide de transfert dans la délétion E3 contenant la séquence NS5b sous le contrôle du promoteur SV40 (figure 1J) 3. 4 Recombinaison homologue avec le génome adénoviral recombinant pIV317 pour obtenir l'adénovirus du titre On a mis en #uvre les étapes suivantes : - Digestion du plasmide pIV317 obtenu dans le point 2. 3 ci-dessus par SrfI (dans Universal Buffer, Stratagene) - Digestion du plasmide pIV336 obtenu dans le point 3. 3 par NheI/SacII (dans Buffer T, Amersham Pharmacia Biotech) et isolement sur gel d'agarose du fragment contenant la cassette pSV40-NS5b - Transformation bactérienne (souche BJ) pour effectuer la recombinaison homologue entre les deux fragments plasmidiques - Sélection des clones bactériens sur milieu LB + ampicilline (100 g/ml) - Maxi-préparation plasmidique (Qiagen) d'un clone positif après analyse de restriction - Analyse de restriction : digestion par SmaI et obtention de fragments de : 4456, 3814, 3540, 3386, 2739, 2463, 2263, 2164, 1455, 1398, 1105, 909, 760, 719, 621, 230, 214 et 180 pb - Obtention du génome adénoviral complet souhaité, délété de la région El, celle-ci ayant été remplacée par la cassette d'expression pCMV-NS3-NS4, et délété de la région E3, celle-ci ayant été remplacée par la cassette d'expression pSV40-NS5B (plasmide pIV342, figure 1K). 4 Confirmation de l'expression des antigènes insérés dans les différents adénovirus L'expression des antigènes du VHC codés par les adénovirus AdNS3NS4, AdNS5b et AdNS3NS4NS5b a été vérifiée par Western blot après infection de cellules Huh7. Comme attendu, tous les antigènes ont été exprimés. Exemple 2 : Préparation d'un poxvirus permettant l'expression des protéines NS3/NS4 et NS5b selon l'invention 1 Poxvirus MVA La souche Modified Virus Ankara MVATG N33 a été fourni par TRANSGENE S. A. (Strasbourg, France). 2 Préparation du plasmide de transfert permettant l'expression du gène NS3/NS4 sous le contrôle du promoteur ph5r 2. 1 Construction du vecteur pIV250 contenant les bras de recombinaison BRG2 et BRD2 du MVA, ainsi que le gène de sélection GPT sous le contrôle du promoteur ph5r (MVA), suivi d'un deuxième promoteur ph5r pour permettre l'expression du gène d' intérêt Dans ce point, on souhaite l'insertion du fragment ph5r-GPT-BRG3-ph5r (provenant du plasmide pTG9997, Transgène) dans le plasmide pTG6018 (Transgène) contenant les bras de recombinaison BRG2 et BRD2. Pour ce faire, on a effectué les étapes suivantes : - Digestion enzymatique par BamHI/SacI (dans React 2 Buffer, Invitrogen) du vecteur pTG6018 (figure 2A) - Digestion enzymatique par BamHl, puis digestion partielle par SacI du plasmide pTG9997 (figure 2B) - Purification selon le protocole de QIAGEN du fragment de restriction de 1047 pb qui contient la séquence codant pour ph5r-GPT-BRG3-ph5r - Ligature (T4 DNA Ligase), transformation bactérienne (souche TG1, Statagene) - Sélection des clones bactériens sur ampicilline (100 g/ml) - Maxi-préparation plasmidique (Qiagen) d'un clone positif après analyse de restriction (EcoRV + HindIII (dans React 2 Buffer, Invitrogen) : fragments de 246,439, 476,826 et 2789 pb ; SacI : fragments de 915 et 3861 pb) - Obtention du plasmide visé (pIV250, figure 2C). 2. 2 Amplification par PCR de la séquence nucléotidique codant pour la polyprotéine NS3/NS4 On a utilisé les oligonucléotides suivants : oIV225 : 5'- GGG GGG CTG CAG ATG GCG CCT ATC ACG GCC TA -3' (SEQ ID N 15) oIV226 : 5'- GGG GGG TCT AGA TTA GCA TGG CGT GGA GCA GT-3' (SEQ ID N 16) et selon le mode opératoire décrit dans l'exemple 1, point 2. 1 ci-dessus, à ceci près qu'on a utilisé une température de 52 C à la place de 62 C 2. 3 Insertion du fragment de PCR NS3-NS4 dans le plasmide pIV250 Pour ce faire, on a effectué les étapes suivantes : - Digestion enzymatique du plasmide pIV250 obtenu dans le point 2. 1 ci-dessus par PstI (dans React 2 Buffer, Invitrigen)/XbaI - Digestion enzymatique du fragment PCR NS3/NS4 par PstI/XbaI - Ligature (T4 DNA Ligase), transformation bactérienne (souche TG1) - Sélection des clones bactériens sur ampicilline (100 ug/ml) - Maxi-préparation plasmidique (Qiagen) d'un clone positif après analyse de restriction :(HindIII (dans React 2 Buffer, Invitrogen) : fragments de 4763 et 2789 pb ; SphI (dans React 6 Buffer, Invitrogen) : 1534 et 5991 pb ; NcoI (dans React 3 Buffer, Invitrogen) : 2764 et 4761 pb) - Obtention du plasmide de transfert contenant la séquence codant pour la polyprotéine NS3/NS4 sous le contrôle du promoteur ph5r (pIV327, figure 2D). 3 Préparation du plasmide pIV328 permettant l'expression de la protéine NS5b sous le contrôle du promoteur p7. 5 3. 1 Amplification par PCR de la séquence nucléotidique codant pour la protéine NS5b On a utilisé les oligonucléotides suivants : oIV227 : 5'- GGG GGG GTC GAC ATG TCA ATG TCC TAC ACA TGG AC-3' (SEQ ID N 17) oIV228 : 5'- GGG GGG GCA TGC TTA CCG GTT GGG GAG CAG GT-3' (SEQ ID N 18) et selon le mode opératoire décrit dans l'exemple 1, point 2. 1 ci-dessus, à ceci près qu'on a utilisé une température de 52 C à la place de 62 C 3. 2 Obtention du plasmide On a effectué les étapes suivantes : - Digestion enzymatique du fragment PCR codant pour NS5b par SalI/SphI - Digestion enzymatique de pTGl 86 (figure 2E, Transgène) par SalI/SphI - Déphosphorylation du vecteur pTG186 (phosphatase alkaline ROCHE) - Ligature (T4 DNA Ligase), transformation bactérienne (souche TG1) - Sélection des clones bactériens sur ampicilline (100 g/ml) - Maxi-préparation plasmidique (Qiagen) d'un clone positif après analyse de restriction : (HindIII : fragments de 1984,2627 et 4437 pb ; BglII : fragments de 321, 557,1361, 1451, 2237 et 3121 pb ; KpnI (dans React 4 Buffer, Invitrogen) : fragments de : 2787 et 6261 pb) - Obtention du plasmide de transfert contenant la séquence codant pour le polypeptide NS5b sous le contrôle du promoteur p7.5 (pIV328, figure 2F) 4 Préparation des plasmides de transfert pIV329 et pIV344 permettant l'expression du gène codant pour la polyprotéine NS3/NS4 sous le contrôle du promoteur ph5r et du gène codant pour la protéine NS5b sous le contrôle du promoteur p7.5 Pour ce faire, on a mis en #uvre les étapes suivantes : - Amplification par PCR de la séquence nucléotidique codant pour la protéine NS5b à partir du plasmide pIV328 obtenu dans le point 3. 2 ci-dessus en utilisant les oligonucléotides suivants: oIV229 : 5'- GGG GGG TCT AGA CCG GTA GTT CGC ATA TAC ATA -3' (SEQ ID N 19) oIV218 : 5'- GGG GGG TCT AGA TTA CCG GTT GGG GAG CAG GT-3' (SEQ ID N 14) et selon le mode opératoire décrit dans l'exemple 1, point 2. 1 ci-dessus, à ceci près qu'on a utilisé une température de 50 C à la place de 62 C - Digestion enzymatique du fragment de PCR par XbaI - Digestion enzymatique du plasmide pIV327 obtenu dans le point 2. 3 ci-dessus par XbaI - Ligature (T4 DNA Ligase), transformation bactérienne (souche TG1) - Sélection des clones bactériens sur ampicilline (100 g/ml) - Maxi préparation plasmidique (Qiagen) de 2 clones positifs après analyse de restriction : (Pstl : pIV329 : fragments de 3033 et 6466 pb, pIV344 : 4641 et 4858 pb ; ApaI (dans React 4 Buffer, Invitrigen) : pIV329 : 454,960 et 8085 pb, pIV344 : 454, 1418 et 7627 pb ; NcoI : pIV329 : 4269, 469 et 4761 pb , pIV344 : 3053,1685 et 4761 pb ; SmaI : pIV329 : 214, 2164, 1444 et 5677 pb, pIV344 : 214, 2164, 928 et 6193 pb) - Obtention soit du plasmide de transfert permettant l'expression de la polyprotéine NS3/NS4 sous le contrôle du promoteur ph5r et de la protéine NS5b sous le contrôle du promoteur p7.5, les 2 cassettes d' expression étant orientées dans le même sens (pIV329, figure 2G), soit du plasmide de transfert permettant l'expression de la polyprotéine NS3/NS4 sous le contrôle du promoteur ph5r et de la protéine NS5b sous le contrôle du promoteur p7.5, les 2 cassettes d'expression étant orientées en sens opposés (pIV344, figure 2H). 5 Confirmation de l'expression des antigènes insérés dans les différents poxvirus On a vérifié par Western blot, après infection de cellules Huh7 avec les poxvirus concernés, que les poxvirus pIV329 et pIV344, contenant les séquences codant pour la polyprotéine NS3NS4 et le polypeptide NS5b, exprimaient ces dits antigènes du VHC. Exemple 3 : Miseen évidence de l'immunogénicité de la combinaison NS3/NS4 et NS5b 1 Immunisation des souris On a immunisé des souris transgéniques HLA-A2. 1, une fois, par injection intra-musculaire d'au moins un adénovirus choisi parmi les adénovirus suivants : - AdNS3NS4 préparé dans l'exemple 1 ci-dessus (point 2.3), - AdNS5b préparé dans l'exemple 1 ci-dessus (point 3.3), - AdNS5a préparé selon le mode opératoire de l'exemple 1, point 2, à ceci près qu'on a utilisé les amorces nucléotidiques suivantes pour amplifier la séquence nucléotidique codant pour le polypeptide NS5a (SEQ ID N 5 et 6) : oIV172: 5'-GGG GGG GGT ACC ATG TCC GGC TCG TGG CTA AGG-3' (SEQ ID N 20) oIV173 : 5'-GGG GGG TCT AGA TTA GCA GCA GAC GAT GTC GTC-3' (SEQ ID N 21 ), qu'on a remplacé dans la PCR la température de 62 C par 56 C, que la digestion enzymatique de pTG13387 et du fragment NS5a a été mise en #uvre par KpnIlXbaI, l'analyse de restriction par digestion par SmaI de pTG13387 donnant les fragments de 180 et 7251 pb et de pTG6624 donnant les fragments de 2263, 621, 5615, 180, 2463, 6480, 1398, 4456, 1455, 3540, 3386, 230 et 3685 pb AdCElE2 selon le mode opératoire de l'exemple 1, point 2, à ceci près qu'on a utilisé les amorces nucléotidiques suivantes pour amplifier la séquence nucléotidique codant pour la polyprotéine Core-El-E2 (autrement appelée CE1E2) (SEQ ID N 7 et 8) : oIV62 : 5'-GGG GGG GCT AGC ATG AGC ACA AAT CCT AAA CCT-3' (SEQ ID N 22) oIV68: 5'-GGG GGG TCT AGA TCA GGC CTC AGC CTG GGC TAT-3' (SEQ ID N 23), qu'on a remplacé dans la PCR la température de 62 C par 56 C, que la digestion enzymatique de pTG13387 et du fragment CE1E2 a été mise en #uvre par NheIlXbaI, l'analyse de restriction par digestion par Smal de pTG13387 donnant les fragments de 163,435, 2270,180 et 5254 pb et de pTG6624 donnant les fragments de 2263,621, 3618, 163, 435, 2270, 180, 2463, 6480, 1398, 4456, 1455, 3540, 3386, 230 et 3685 pb, et AdpGal (Transgène), selon le protocole suivant : - 109 pfu d'AdNS3NS4 ou - 109 pfu d'AdNS5b ou - 109 pfu d'AdCEICE2 ou - 109 pfu d'AdNS3NS4 et 109 pfu d'AdNS5b ou - 109 pfu d'AdNS3NS4, 109 pfu d'AdNS5b et 109 pfu d'AdNS5a - 109 pfu d'AdNS3NS4, 109 pfu d'AdNS5b et 109 pfu d'AdCElE2 ou - 109 pfu d'Adss-Gal à titre de témoin. Avant immunisation, on a vérifié, par Western blot, l'expression des antigènes du VHC et de (3-Gal par les différents adénovirus utilisés pour l'immunisation. 2 Tests CTL et ELISPOT Quinze jours après l'injection, on a analysé la réponse cellulaire en isolant les cellules de la rate (splénocytes) des souris et on a effectué un test CTL et un test ELISPOT comme suit : Pour le test CTL, on a cultivé ces splénocytes en plaque 24 puits en présence de: - 5 M de l'épitope GLL (GLLGCIITSL, SEQ ID N 24) dans le cas des splénocytes provenant de souris ayant reçu AdNS3NS4, 5 M de l'épitope ALY (ALYDWSTL, SEQ ID N 25) ou 5 M de l'épitope KLQ (KLQDCTMLV, SEQ ID N 26) dans le cas des splénocytes provenant de souris ayant reçu AdNS5b ou de 5 M de l'épitope DLM (DLMGYIPLV, SEQ ID N 27) dans le cas des splénocytes provenant de souris ayant reçu AdCElE2, lesdits épitopes étant sous la forme de peptide synthétique (Eurogentex), et - 10 U d'interleukine 2 recombinante murine (Brinster et al., Hepatology 2001) par ml dans du milieu minimum essentiel alpha (aMEM) pendant 5 jours. Au Sème jour, on a effectué l'étape de restimulation qui consiste à rajouter aux splénocytes en culture des splénocytes de souris naïves en présence desdits épitopes pendant 2 jours. Au 7ème jour, on a réalisé le test CTL en lui-même qui consiste à mettre en présence les splénocytes des souris immunisées après les 7 jours de culture (cellules effectrices) et des cellules EL4 S3-Rob HDD chargées avec 10 M desdits épitopes et marquées au Cr51 (cellules cibles). On a déterminé l'activité cytotoxique spécifique des cellules effectrices par la mesure, après 4 h d'incubation avec les cellules cibles, du Cr51 libéré suite à la lyse des cellules cibles en utilisant un appareil de comptage y-Cobra II (Packard, Rungis, France). On a déterminé la libération spontanée et maximale à partir de puits contenant soit du milieu seul, soit du tampon de lyse (HC1 IN). On a calculé le pourcentage spécifique de cytotoxicité par la formule : (libération dans l'essai - libération spontanée)/ (libération libération spontanée) #100. On a déterminé la lyse spécifique d'épitope par la différence entre le pourcentage de lyse spécifique obtenu en présence ou en l'absence desdits épitopes. On a effectué le test ELISPOT en cultivant les splénocytes pendant 48 h dans des plaques 96 puits Multiscreen (Millipore) préalablement coatées avec de l'anticorps anti-interféron gamma (IFNy) (10 g/ml final). On a mis en culture les splénocytes en présence de 10 M des épitopes appropriés, comme indiqué ci-dessus, et de 10 U d'interleukine 2 recombinante murine par ml dans du aMEM. Pour le contrôle positif, on a cultivé les splénocytes en présence de concanavaline A (5 g/ml). Pour le contrôle négatif, on a cultivé les splénocytes soit en présence d'un peptide non spécifique appartenant à la protéine de capside du VHC, de séquence DLMGYIPLV (également appelé peptide irrelevant), soit en milieu seul sans épitope. On a lavé les puits à trois reprises, respectivement avec du PBS-Tween 0,05% puis du PBS, opération suivie d'une incubation de 2 h avec des anticorps anti-IFNy de souris biotinylés. Après lavage, on a incubé les puits pendant 1 h avec un conjugué streptavidine-peroxydase de raifort et on a révélé l'activité enzymatique par dégradation du substrat AEC (aminoethylcarbazole). Les spots obtenus ont été comptés grâce à un lecteur ELISpot Zeiss (microscope Zeiss couplé au logiciel KS-ELISpot). Les résultats sont indiqués sur les figures 3 à 5 sur lesquelles S correspond à souris et Souris neg correspond à la souris témoin. Ces résultats mettent en évidence que - l'AdNS3NS4 induit bien une réponse à médiation cellulaire spécifique des antigènes exprimés, comme illustré sur la figure 3A et 3B par la détection de lymphocytes T spécifiques de l'épitope GLL contenu dans NS3. - l'AdNS5b induit bien une réponse à médiation cellulaire spécifique des antigènes exprimés, comme illustré sur la figure 4 par la détection de lymphocytes T spécifiques de l'épitope ALY et KLQ contenus dans NS5b. - l'AdCElE2 induit bien une réponse à médiation cellulaire spécifique des antigènes exprimés, comme illustré sur la figure 5 par la détection de lymphocytes T spécifiques de l'épitope DLM contenus dans la protéine Core. 3 Test d'épreuve in vivo à l'aide d'un virus vaccine recombinant Afin d'évaluer si les réponses immunes spécifiques induites par les différents adénovirus étaient capables d'induire une protection contre une épreuve infectieuse ( protection in vivo ), nous avons soumis les souris vaccinées à une telle épreuve. La souris n'étant pas infectable directement par le VHC, nous avons utilisé, pour relier l'induction d'une réponse immunitaire spécifique et la résistance à une infection, un virus vaccine recombinant (souche WR) codant pour les protéines non structurales du VHC (NS2 à NS5b) pour réaliser cette épreuve. Ce virus recombinant de la vaccine, après injection intra-péritonéale de 107 pfu à la souris, va se répliquer chez l' animal. La réplication de ce virus induit une réponse immunitaire à la fois spécifique des antigènes de la vaccine et spécifique des antigènes du VHC, comme il exprime aussi les protéines NS du VHC. Cette réponse spécifique des antigènes du VHC sera d'autant plus efficace et vigoureuse que les souris auront déjà reçu un vaccin exprimant les antigènes du VHC. En d'autres termes, plus la vaccination (dans le cas présent réalisée avec les adénovirus recombinants) aura été efficace (c'est-à-dire que le système immun des souris aura été primé efficacement par le vaccin), plus la réponse antiVHC générée après l'épreuve par le virus recombinant de la vaccine sera forte et, par voie de conséquence, plus les souris seront protégées contre cette épreuve. En pratique, plus le taux résiduel de virus de la vaccine dans les souris sera faible, plus la protection ou la neutralisation due à la vaccination aura été efficace. La neutralisation du virus vaccine reflète à la fois la réponse cellulaire induite par les protéines du VHC et par les protéines de la vaccine. La neutralisation est évaluée par titration du virus vaccine résiduel à partir des ovaires des animaux comme suit : les ovaires sont prélevés à 4 jours post-épreuve, soniqués, congelés-décongelés 3 fois puis après centrifugation, des dilutions successives de surnageant sont titrées selon la technique des plages de lyse (Murata et al., PNAS, vol. 100, p. 6753-6758) sur cellules Hutk-. Les titres viraux sont déterminés en pfu/ml/mg d'ovaire. On a déterminé le titre de virus recombinant de la vaccine pour 4 groupes de 8 souris immunisées par les combinaisons d'adénovirus suivantes : AdNS3NS4 + AdNS5b (1er groupe), AdNS3NS4 + AdNS5b + AdNS5a (2ème groupe), AdNS3NS4 + AdNS5b +AdCElE2 (3ème groupe) et AdpGal (4ème groupe). Les résultats, donnés sur la figure 6, sont traités de façon statistique en se basant sur le test non paramétrique de Mann Whitney Wilcoxon (Methodes Statistiques à l'usage des médecins et des biologistes, Collection Statistique en Biologie et en Médecine, Flammarion Medecine Sciences, (D. Schwartz), 1977) qui repose sur une comparaison des moyennes, et permet la comparaison des valeurs de deux échantillons x et y indépendants. Ce test est mis en oeuvre comme suit : l'ensemble des valeurs des deux groupes x et y à comparer est classé de façon croissante. Un rang est ensuite attribué à chaque valeur, et la somme des rangs est effectuée. On obtient alors Wx et Wy. On calcule alors une valeur de référence appelée (Wx)t (valeur théorique dans l'hypothèse nulle où Wx n'est pas différent de Wy) et liée par le rapport : n(N+l)/2, avec n = nombre de souris testées dans le groupe x et N = nombre de souris testées dans les groupes x et y. Si Wx est inférieur à (Wx)t (taux résiduel de virus de la vaccine dans les souris faible), alors on peut conclure que la neutralisation due à la vaccination est significativement efficace. Si nous prenons l'exemple du groupe AdNS3NS4S5b noté x comparé au groupe AdpGal noté y, nous obtenons les valeurs suivantes : Wx = 1+2+4+6+8+11+13+14 = 59 (8 souris testées) Wy = 3+5+7+9+10+12+15+16 = 77 (8 souris testées) Sous l'hypothèse nulle, Wx n'est pas différent de Wy, la valeur attendue est : (Wx)t= (1/2)*8*17 = 68 Wx Les valeurs statistiques pour les autres groupes de souris sont indiquées dans le tableau ci-dessous : Tableau Groupe/AdpGal Wx (Wx)t AdNS3NS4+NS5b 52 68 AdNS3NS4+NS5b+ NS5a 68 68 AdNS3NS4+NS5b+ CE1E2 74 68 Les valeurs dans le tableau ci-dessus montrent que seule une vaccination des souris par la combinaison des Adénovirus NS3NS4 et adénovirus NS5b est capable d'induire une neutralisation significative de la réplication du virus de la vaccine utilisé dans l'épreuve par rapport au groupe de souris contrôle vacciné par l'Ad(3Gal. Les vaccinations réalisées en utilisant les combinaisons comprenant (AdNS3NS4 + AdNS5b + AdNS5a) ou (AdNS3/NS4 + AdNS5b + AdCElE2), n'aboutissent pas à une différence significative par rapport au groupe de souris contrôle immunisé par AdpGal. Ces résultats permettent donc de mettre en évidence, de façon inattendue, la protection supérieure d'une vaccination combinant la polyprotéine NS3NS4 et le polypeptide NS5b. REVENDICATIONS 1. Composition peptidique caractérisée en ce qu'elle comprend une polyprotéine NS3/NS4 du virus de l'hépatite C, ainsi qu'un polypeptide NS5b du virus de l'hépatite C. 2. Composition peptidique selon la revendication 1, caractérisée en ce que NS3 et/ou NS4 et/ou NS5b proviennent de virus de génotypes différents. 3. Composition peptidique selon la revendication 1, caractérisée en ce que NS3, NS4 et NS5b proviennent d'un virus de même génotype, de préférence de génotype lb. 4. Vecteur d'expression caractérisé en ce qu'il comprend une séquence nucléotidique codant pour la polyprotéine NS3/NS4 et une séquence nucléotidique codant pour le polypeptide NS5b, ainsi que les moyens nécessaires à leur expression. 5. Vecteur d'expression selon la revendication 4, caractérisé en ce que les séquences nucléotidiques codent pour une polyprotéine et un polypeptide issus de virus de génotypes différents. 6. Vecteur d'expression selon la revendication 4, caractérisé en ce que les séquences nucléotidiques codent pour une polyprotéine et un polypeptide issus d'un virus de même génotype, de préférence le génotype lb. 7. Vecteur d'expression selon l'une quelconque des revendications 4 à 6, caractérisé en ce que ce vecteur est un adénovirus. 8. Vecteur d'expression selon la revendication 7, caractérisé en ce que le génome de l'adénovirus est modifié de façon à remplacer la région El par la cassette d'expression CMV-NS3-NS4 et à remplacer la région E3 par la cassette d'expression SV40-NS5b. 9. Vecteur d'expression selon l'une quelconque des revendications 4 à 6, caractérisé en ce que ce vecteur est un poxvirus. 10. Vecteur d'expression selon la revendication 9, caractérisé en ce que le génome du poxvirus est modifié de façon à insérer la cassette d'expression ph5r-NS3NS4 et à insérer la cassette d'expression p7.5-NS5b. 11. Microorganisme ou cellule hôte transformé par un vecteur d'expression tel que défini dans l'une quelconque des revendications 4 à 10. 12. Anticorps dirigés contre la composition peptidique telle que définie dans l'une quelconque des revendications 1 à 3 ou contre les vecteurs d'expression tels que définis dans l'une quelconque des revendications 4 à 10. 13. Utilisation d'une composition peptidique telle que définie dans l'une quelconque des revendications 1 à 3, ou bien d'un vecteur d'expression tel que défini dans l'une quelconque des revendication 4 à 10, ou bien les séquences nucléotidiques codant pour ladite polyprotéine NS3/NS4 et ledit polypeptide NS5b correspondant aux séquences contenues dans les vecteurs d'expression tels que définis dans l'une quelconque des revendication 4 à 10, placées sous le contrôle d'éléments nécessaires à une expression constitutive et/ou inductible desdits peptides, ou bien des anticorps tels que définis dans la revendication 12, pour la préparation d'un médicament destiné à l'inhibition, la prévention ou le contrôle d'une infection provoquée par le virus de l'hépatite C chez un animal, de préférence l'homme. 14. Composition pharmaceutique, notamment vaccin, comprenant à titre de substance active la composition peptidique telle que définie dans les revendications 1 à 3, ou bien un vecteur d'expression tel que défini dans l'une quelconque des revendication 4 à 10, ou bien au moins un anticorps tel que défini dans la revendication 12. 15. Composition pharmaceutique selon la revendication 14, caractérisée en ce qu'elle comprend également un véhicule pharmaceutiquement approprié. 16. Kit pharmaceutique, notamment vaccinal, caractérisé en ce qu'il comprend un vecteur d'expression tel que défini dans la revendication 7 ou 8 et un vecteur d'expression tel que défini la revendication 9 ou 10. 17. Kit pharmaceutique, notamment vaccinal, comprenant au moins un vecteur d'expression tel que défini dans l'une quelconque des revendications 4 à 10 et (i) au moins une composition peptidique telle que définie dans les revendications 1 à 3 ou (ii) des anticorps tels que définis dans la revendication 12 ou (iii) au moins une séquence nucléotidique codant pour la polyprotéine NS3/NS4 et pour le polypeptide NS5b.