Brevet FR2840530A1 — publié le 20031212

La présente invention se rapporte à une composition cosmétique pour lutter contre la canitie comprenant au moins un inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomérase (TRP-2). Le follicule pileux est une invagination tubulaire de l'épiderme qui s'enfonce jusqu'aux couches profondes du derme. La partie inférieure, ou bulbe pileux, comporte elle-même une invagination dans laquelle se trouve la papille dermique. La partie inférieure du bulbe est une zone de prolifération cellulaire où se trouvent les précurseurs des cellules kératinisées constituant le cheveu. Les cellules en ascension issues de ces précurseurs se kératinisent progressivement dans la partie supérieure du bulbe, et cet ensemble de cellules kératinisées formera la tige pilaire. La couleur des cheveux et des poils repose notamment sur la présence en quantités et ratios variables de deux groupes de mélanines : les eumélanines (pigments bruns et noirs) et les phéomélanines (pigments rouges et jaunes). La pigmentation du cheveu et des poils requiert la présence de mélanocytes au niveau du bulbe du follicule pileux. Ces mélanocytes sont dans un état actif, c'est-à-dire qu'ils synthétisent des mélanines. Ces pigments sont transmis aux kératinocytes destinés à former la tige pilaire ce qui conduira à la pousse d'un cheveu ou d'un poil pigmenté. Cette structure est appelée ciaprès unité folliculaire de pigmentation . Chez les mammifères, la mélanogénèse implique au moins trois enzymes : la tyrosinase, la DOPAchrome tautomérase (TRP-2, pour Tyrosinase Related Protein 2) et la DHICAoxydase (TRP-1, pour Tyrosinase Related Protein 1). La tyrosinase est l'enzyme qui initie la biosynthèse des mélanines. Elle est également décrite comme étant l'enzyme limitant de la mélanogénèse. La TRP-2 catalyse la tautomérisation du DOPAchrome en acide 5,6-Dihydroxyindole-2carboxylique (DHICA). En l'absence de TRP-2, le DOPAchrome subit une décarboxylation spontanée pour former le 5,6-dihydroxyindole (DHI). DHICA et DHI sont tous deux des précurseurs de pigments, TRP-1 oxyde les molécules de DHICA pour former des dérivés de quinones (Pawelek JM and Chakraborty AK. The enzymology of melanogenesis. In: Nordlund JJ, Boissy RE, Hearing VJ, King RA, Ortonne J-P. The Pigmentary System: Physiology and Pathophysiology. New York: Oxford university press ; p. 391-400). Les trois enzymes, tyrosinase, TRP-2 et TRP-1, apparaissent spécifiquement impliquées dans la mélanogénèse. De plus, l'activité de ces trois enzymes a été décrite comme nécessaire à l'activité maximale de biosynthèse des eumélanines. L'expression de TRP-2 a été observée dans les poils de souris noires, à la fois dans les mélanocytes actifs du bulbe et dans les mélanocytes quiescents de la gaine épithéliale externe. De plus, il est connu que l'activité DOPAchrome tautomérase est augmentée pendant la phase anagène chez la souris noire. Cependant aucune corrélation claire n'a été établie entre l'expression de TRP-2 et l'intensité de la pigmentation (Sturm et al. 1995). Par ailleurs, TRP-2 a également été décrite comme conférant aux mélanocytes qui l'expriment une résistance à des agents endommageant l'ADN tel que le cisdiamminedichloroplatinum(II) (Chu et al. 2000 et Pak et al. 2000). Ces résultats suggèrent que TRP-2 serait aussi impliquée dans une fonction indépendante de la mélanogènèse, l'enzyme pourrait jouer un rôle cytoprotecteur. Le cheveu et le poil subissent un cycle. Ce cycle comprend une phase de croissance (phase anagène), une phase de dégénérescence (phase catagène) et une phase de repos (phase télogène) à la suite de laquelle une nouvelle phase anagène se développera. En raison de ce cycle pilaire, l'unité folliculaire de pigmentation doit également être cycliquement renouvelée. Ce processus a été récemment décrit chez l'homme (Commo S. et Bernard B., 2000, Pigment Cell Res. 13:253-259). Il a plus particulièrement été montré qu'au cours de la transition télogène-anagène, une partie des mélanocytes inactifs contenus dans la capsule télogène prolifère, se positionne autour de la papille dermique du bulbe naissant et commence à exprimer des enzymes nécessaires à la synthèse de mélanines. En parallèle, l'autre partie des mélanocytes reste inactive dans la région supérieure du follicule pileux. Ces enzymes mélanogènes seront exprimées dans les mélanocytes du bulbe pendant toute la durée de la phase anagène mais ne seront plus exprimées pendant les phases catagène et télogène. Le cycle normal des mélanocytes dans le follicule pileux humain requiert la présence de mélanocytes quiescents dans la région supérieure du follicule pileux qui seront cycliquement activés pour régénérer l'unité folliculaire de pigmentation. Il est admis que la canitie (blanchissement naturel des cheveux) est associée à une diminution de mélanine dans la tige pilaire. La cause de cette diminution n'est pas à ce jour élucidée. Plusieurs hypothèses sont avancées, elle pourrait être liée à une diminution de l'activité mélanogène, une altération du transfert des mélanines ou une diminution du nombre de mélanocytes dans le bulbe (Tobin et Paus, 2001). Jusqu'à présent, on pensait que des mélanocytes quiescents étaient présents dans les follicules pileux de cheveux blancs (Takada et al. 1992, Horikawa et al. 1996, Jenner et Randall 2000). Or, la Demanderesse a constaté que la progression de la canitie est associée à une diminution du nombre de mélanocytes dans les bulbes pileux, qui, bien qu'en nombre restreint, synthétisent et transfèrent les mélanines. La Demanderesse a également observé de façon inattendue et surprenante que la population de mélanocytes quiescents de la région supérieure du follicule pileux humain est également diminuée au cours du processus de canitie, les cheveux blancs ne possédant plus que quelques voire plus aucun - mélanocytes, contrairement à l'infundibulum et l'épiderme avoisinant ces cheveux blancs. Cette disparition affecte prématurément et spécifiquement les mélanocytes contenus dans les cheveux. Il apparaît donc nécessaire de lutter contre la disparition des mélanocytes des follicules pileux humains, processus affectant à la fois les mélanocytes actifs des bulbes et les mélanocytes quiescents de la région supérieure des follicules pileux, pour lutter contre la canitie. Par ailleurs, la Demanderesse a également constaté que l'enzyme TRP-2 n'est pas exprimée dans les mélanocytes des follicules pileux humains pigmentés (bruns, noirs et roux) chez l'individu caucasien, asiatique et africain. Cette enzyme n'est détectée ni dans les mélanocytes actifs du bulbe, ni dans les mélanocytes quiescents de la région supérieure du follicule pileux humain alors qu'elle est exprimée dans l'épiderme et l'infundibulum de l'individu caucasien, africain et asiatique. L'absence de TRP-2 est associée à la disparition précoce des mélanocytes qui ne l'expriment pas, c'est-à-dire, les mélanocytes quiescents de la région supérieure du follicule pileux et les mélanocytes actifs du bulbe. La Demanderesse a montré qu'il était possible d'induire la synthèse de TRP-2. En induisant la synthèse de TRP-2, elle a identifié un moyen de maintenir la population de mélanocytes du follicule pileux responsables de la pigmentation des cheveux, elle a ainsi identifié un moyen pour prévenir et/ou limiter et/ou stopper le développement de la canitie et même d'induire la pigmentation des cheveux et/ou des poils gris ou blancs. Ainsi un premier objet de l'invention se rapporte à une composition cosmétique pour lutter contre la canitie comprenant dans un milieu cosmétiquement acceptable au moins un agent inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomérase (TRP-2). On entend par agent inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomerase un composé capable de stimuler la synthèse de l'enzyme DOPAchrome tautomérase. Il pourra s'agir d'un vecteur d'expression codant pour la DOPAchrome tautomérase. Pour la construction de ce vecteur d'expression de l'enzyme, on préférera utiliser un promoteur spécifique d'un tissu, en particulier un promoteur spécifique de mélanocytes. L'agent inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomerase (TRP-2) pourra notamment être choisi parmi les composés suivant : - l'hexaméthylène bisacetamide (HMBA Fang et al. 2001) ; - les hormones stéroïdiennes, telles que le diethylstilbestrol et/ou l'estradiol (Kippenberger et al. 1998) ; - la glycyrrhizine (Jung et al. 2001) ; -l'IL1[alpha] (Abdel-Malek et al., J.Cell Sci. 106:1323-1331, 1993). L'agent inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomérase pourra également être un modulateur d'un facteur endogène, tel qu'un modulateur de l'expression de Sox10, capable d'activer le promoteur de la DOPAchrome tautomérase (TRP-2). Dans une autre variante de l'invention, l'agent inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomerase pourra être un vecteur d'expression codant pour un agent inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomérase, tel que Sox10. Pour la construction de ce vecteur d'expression de l'agent inducteur, on préférera utilser un promoteur spécifique d'un tissu, en particulier un promoteur spécifique de mélanocytes et/ou de kératinocytes. Dans une variante préférée, l'expression de l'agent inducteur de la DOPAchrome tautomérase par le vecteur d'expression sera elle-même inductible. La composition selon l'invention comprend une quantité d'agent inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomerase comprise entre 0,001 et 10 % en poids par volume. La composition selon l'invention peut être administrée par voie orale ou appliquée sur la peau (sur toute zone cutanée du corps) et/ou le cuir chevelu ou les cheveux. Par voie orale, la composition selon l'invention peut contenir le ou les agents inducteurs de l'expression de la DOPAchrome tautomérase composés actifs en solution dans un liquide alimentaire tel qu'une solution aqueuse ou hydroalcoolique, éventuellement aromatisée. Ils peuvent également être incorporés dans un excipient solide ingérable et se présenter par exemple sous forme de granulés, de pilules, de comprimés ou de dragées. Ils peuvent également être placés en solution dans un liquide alimentaire luimême éventuellement conditionné dans des capsules ingérables. Selon le mode d'administration, la composition de l'invention peut se présenter sous toutes les formes galéniques normalement utilisées, particulièrement en cosmétologie. Une composition préférée de l'invention est une composition cosmétique adaptée à une application topique sur le cuir chevelu et/ou la peau. Pour une application topique, la composition utilisable selon l'invention peut être notamment sous la forme d'une solution aqueuse, hydroalcoolique ou huileuse ou de dispersion du type lotion ou sérum, d'émulsions de consistance liquide ou semi-liquide du type lait, obtenues par dispersion d'une phase grasse dans une phase aqueuse (H/E) ou inversement (E/H), ou de suspensions ou émulsions de consistance molle du type crème ou gel aqueux ou anhydres, ou encore de microcapsules ou microparticules, ou de dispersions vésiculaires de type ionique et/ou non ionique. Elle peut ainsi se présenter sous forme d'onguent, de teinture, de crème, de pommade, de poudre, de timbre, de tampon imbibé, de solution, d'émulsion ou de dispersion vésiculaire, de lotion, de gel, de spray, de suspension, de shampooing, d'aérosol ou de mousse. Elles peuvent être anhydres ou aqueuses. Elle peut également consister en des préparations solides constituant des savons ou des pains de nettoyage. Ces compositions sont préparées selon les méthodes usuelles. La composition utilisable selon l'invention peut en particulier être une composition pour soins capillaires, et notamment un shampooing, une lotion de mise en plis, une lotion traitante, une crème ou un gel coiffant, une composition de teintures (notamment teintures d'oxydation) éventuellement sous forme de shampooings colorants, des lotions restructurantes pour les cheveux, de masque. La composition cosmétique selon l'invention sera préférentiellement une crème, une lotion capillaire, un shampoing ou un après-shampoing. Les quantités des différents constituants des compositions utilisables selon l'invention sont celles classiquement utilisées dans les domaines considérés. Lorsque la composition utilisable selon l'invention est une émulsion, la proportion de la phase grasse peut aller de 5% à 80% en poids, et de préférence de 5% à 50% en poids par rapport au poids total de la composition. Les huiles, les cires, les émulsionnants et les co-émulsionnants utilisés dans la composition sous forme d'émulsion sont choisis parmi ceux classiquement utilisés dans le domaine cosmétique. L'émulsionnant et le co- émulsionnant sont présents, dans la composition, en une proportion allant de 0,3% à 30% en poids, et de préférence de 0,5 à 20% en poids par rapport au poids total de la composition. L'émulsion peut, en outre, contenir des vésicules lipidiques. Lorsque la composition utilisable selon l'invention est une solution ou un gel huileux, la phase grasse peut représenter plus de 90% du poids total de la composition. Dans une variante de l'invention, la composition sera telle que l'agent inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomerase est encapsulé dans un enrobage tel que des microsphères, des nanosphères, des oléosomes ou des nanocapsules, l'enrobage sera choisi selon la nature chimique de l'agent inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomérase. A titre d'exemple, les microsphères pourront être préparées selon la méthode décrites dans la demande de brevet EP 0 375 520. Les nanosphères pourront se présenter sous forme de suspension aqueuse et être préparées selon les méthodes décrites dans les demandes de brevet FR 0015686 et FR 0101438. Les oléosomes consistent en une émulsion huile dans eau formée par des globules huileux pourvus d'un enrobage cristal liquide lamellaire dispersé dans une phase aqueuse (voir les demandes de brevet EP 0 641 557 et EP 0 705 593). L'agent inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomerase pourra aussi être encapsulé dans des nanocapsules consistant en un enrobage lamellaire obtenu à partir d'un tensio-actif siliconé (voir la demande de brevet EP 0 780 115), les nanocapsules pourront également être préparées à base de polyesters sulfonique hydrodispersibles (voir la demande de brevet FR 0113337). L'agent inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomérase pourra également être complexé à la surface de globules huileux cationiques, quelques soit leur taille (voir les demandes de brevet EP 1 010 413, EP 1 010 414, EP 1 010 415, EP 1 010 416, EP 1 013 338, EP 1 016 453, EP 1 018 363, EP 1 020 219, EP 1 025 898, EP 1 120 101, EP 1 120 102, EP 1 129 684, EP 1 160 005 et EP 1 172 077). L'agent inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomérase peut enfin être complexé à la surface de nanocapsules ou nanoparticules pourvues d'un enrobage lamellaire (Voir EP 0 447 318 et EP 0 557 489) et contenant un tensio-actif cationique à la surface (voir les références citées précédemment pour les tensio-actifs cationiques). En particulier, on préférera une composition telle que l'enrobage dans lequel l'agent inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomerase a un diamètre inférieur ou égal à 10 m. De façon connue, la composition selon l'invention peut contenir également des adjuvants habituels dans le domaine cosmétique, tels que les gélifiants hydrophiles ou lipophiles, les additifs hydrophiles ou lipophiles, les conservateurs, les antioxydants, les solvants, les parfums, les charges, les filtres, les absorbeurs d'odeur et les matières colorantes. Les quantités de ces différents adjuvants sont celles classiquement utilisées dans le domaine cosmétique, et par exemple de 0,01% à 10% du poids total de la composition. Ces adjuvants, selon leur nature, peuvent être introduits dans la phase grasse, dans la phase aqueuse et/ou dans les sphérules lipidiques. Comme huiles ou cires utilisables dans l'invention, on peut citer les huiles minérales (huile de vaseline), les huiles végétales (fraction liquide du beurre de karité, huile de tournesol), les huiles animales (perhydrosqualène), les huiles de synthèse (huile de Purcellin), les huiles ou cires siliconées (cyclométhicone) et les huiles fluorées (perfluoropolyéthers), les cires d'abeille, de carnauba ou paraffine. On peut ajouter à ces huiles des alcools gras et des acides gras (acide stéarique). Comme émulsionnants utilisables dans l'invention, on peut citer par exemple le stéarate de glycérol, le polysorbate 60 et le mélange de PEG-6/PEG-32/Glycol Stéarate vendu sous la dénomination de Tefose# 63 par la société Gattefosse. Comme solvants utilisables dans l'invention, on peut citer les alcools inférieurs, notamment l'éthanol et l'isopropanol, le propylène glycol. Comme gélifiants hydrophiles utilisables dans l'invention, on peut citer les polymères carboxyvinyliques (carbomer), les copolymères acryliques tels que les copolymères d'acrylates/alkylacrylates, les polyacrylamides, les polysaccharides tels que l'hydroxypropylcellulose, les gommes naturelles et les argiles, et, comme gélifiants lipophiles, on peut citer les argiles modifiées comme les bentones, les sels métalliques d'acides gras comme les stéarates d'aluminium et la silice hydrophobe, éthylcellulose, polyéthylène. Les compositions utilisables selon l'invention peuvent associer au moins un agent inducteur de l'expression de TRP-2 à d'autres agents actifs. Parmi ces agents actifs, on peut citer à titre d'exemple : - les agents modulant la différenciation et/ou la prolifération et/ou la pigmentation des cellules de la peau tels que le rétinol et ses esters, la vitamine D et ses dérivés, les oestrogènes tels que l'oestradiol, les modulateurs de l'AMPc tels que les dérivés de POMC, l'adénosine, ou la forskoline et ses dérivés, les prostaglandines et leurs dérivés, la triiodotrionine et ses dérivés ; - des extraits de végétaux tels que ceux d'Iridacées ou de soja, extraits pouvant alors contenir ou non des isoflavones ; - des extraits de micro-organismes ; - les agents anti-radicaux libres tels que l'a-tocophérol ou ses esters, les superoxyde dismutases ou ses mimétiques, certains chélatants de métaux ou l'acide ascorbique et ses esters ; - les anti-séborrhéiques tels que certains acides aminés soufrés, l'acide 13-cis rétinoïque, l'acétate de cyprotérone ; - les autres agents de lutte contre les états desquamatifs du cuir chevelu comme le zinc pyrithione, le disulfure de sélénium, le climbazole, l'acide undécylénique, le Kétoconazole, la piroctone olamine (octopirox) ou la ciclopiroctone (ciclopirox) ; en particulier, il pourra s'agir d'actifs stimulant la repousse et/ou favorisant le ralentissement de la chute des cheveux, on peut plus particulièrement citer à titre non limitatif : - les esters d'acide nicotinique, dont notamment le nicotinate de tocophérol, le nicotinate de benzyle et les nicotinates d'alkyles en C1-C6 comme les nicotinates de méthyle ou d'hexyle ; - les dérivés de pyrimidine, comme le 2,4-diamino 6-piperidinopyrimidine 3-oxyde ou "Minoxidil" décrit dans les brevets US 4,139,619 et US 4,596,812 ; - les agents inhibiteurs de lipoxygenase ou inducteur de cyclo-oxydase favorisant la repousse des cheveux comme ceux décrits par la Demanderesse dans la demande de brevet européen EP 0 648 488 ; - les agents antibactériens tels que les macrolides, les pyranosides et les tétracyclines, et notamment l'Erythromycine ; - les agents antagonistes de calcium, comme la Cinnarizine, la Nimodipine et la Nifedipine ; - des hormones, telles que l'estriol ou des analogues, ou la thyroxine et ses sels ; - des agents antiandrogènes, tels que l'oxendolone, la spironolactone et la flutamide ; - des inhibiteurs stéroïdiens ou non stéroïdiens des 5-a-réductases tels que ceux décrits par la Demanderesse dans les demandes de brevet européen EP 0 964 852 et EP 1 068 858 ou encore le finastéride ; - des agonistes des canaux potassiques dépendant de l'ATP tels que la cromakalim et le nicorandil. Un autre objet de l'invention est l'utilisation d'un agent inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomérase pour protéger les mélanocytes du follicule pileux des agents cytotoxiques. En particulier, l'objet de l'invention concerne l'utilisation d'un agent inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomérase pour prévenir et/ou limiter et/ou arrêter le développement de la canitie. L'objet de l'invention se rapporte aussi à l'utilisation d'un agent inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomérase pour favoriser la pigmentation naturelle des cheveux et/ou des poils gris. Un autre objet de la présente invention se rapporte à un procédé de traitement cosmétique de la canitie caractérisé en ce qu'on applique sur la zone à traiter une composition comprenant au moins un agent inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomérase. L'invention se rapporte aussi à un procédé traitement cosmétique destiné à favoriser la pigmentation naturelle des cheveux et/ou des poils gris ou blancs caractérisé en ce qu'on applique sur la zone à traiter une composition comprenant au moins un agent inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomérase. Les zones à traiter peuvent être, par exemple et sans aucune limitation, le cuir chevelu, les sourcils, la moustache et/ou la barbe. Plus particulièrement, les procédés de traitement de la canitie et de pigmentation naturelle des cheveux et/ou poils gris ou blancs consistent à appliquer une composition comprenant au moins un agent inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomerase choisi parmi l'hexaméthylène bisacetamide (HMBA), une hormone stéroïdienne, telle que le diethylstilbestrol ou l'oestradiol, la glycyrrhizine, l'IL1[alpha], un modulateur d'un facteur endogène situé en amont du promoteur de la DOPAchrome tautomérase (TRP-2), un vecteur d'expression codant pour la DOPAchrome tautomérase (TRP-2) ou un vecteur d'expression codant pour un agent inducteur de la DOPAchrome tautomérase, tel que Sox10. Les procédés de traitement pour lutter contre la canitie et/ou pour stimuler la pigmentation naturelle des cheveux et/ou des poils gris ou blancs peut par exemple consister à appliquer la composition sur les cheveux et le cuir chevelu, le soir, garder la composition toute la nuit au contact et éventuellement effectuer un shampooing le matin ou laver les cheveux à l'aide de cette composition et à laisser à nouveau en contact quelques minutes avant de rincer. La composition conforme à l'invention s'est révélée particulièrement intéressante lorsqu'elle est appliquée sous forme de lotion capillaire, éventuellement rincée ou même sous forme d'un shampooing. Dans un autre de ses objets, la présente invention se rapporte à une méthode d'identification d'un agent inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomérase comprenant les étapes suivantes : a- mise en culture d'une population de mélanocytes dans un milieu où les mélanocytes n'expriment pas la DOPAchrome tautomérase ; b- ajout d'un composé pour lequel on souhaite tester l'activité d'inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomérase au milieu de culture ; c- incubation des mélanocytes pendant un temps suffisamment long pour que les mélanocytes puissent exprimer la DOPAchrome tautomérase dans l'hypothèse où le composé est inducteur ; d- mesure de l'expression de DOPAchrome tautomérase ; e- sélection des composés induisant l'expression de DOPAchrome tautomérase. Dans un mode de réalisation particulier de la méthode d'identification d'un agent inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomérase, les cultures cellulaires sont réalisées en étuve, à 37 C, 5% CO2. En particulier, l'étape (a) pourra être réalisée selon le protocole suivant : les mélanocytes sont ensemencés à JO avec du milieu M2 (PromoCell, Heidelberg, D). Après un temps nécessaire à l'adhérence des cellules compris entre 2 et 18 heures, le milieu est remplacé par un milieu dans lequel les mélanocytes n'expriment pas la DOPAchrome tautomerase. Les cellules sont maintenues dans ce milieu de culture le temps compris entre 12 et 72 heures nécessaire à la diminution de l'expression de TRP- 2. L'étape (b) pourra être réalisée selon le protocole suivant : les mélanocytes sont traités en culture par le composé pour lequel on souhaite tester l'activité d'inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomérase pendant le temps nécessaire à l'induction de l'expression de TRP2, ce temps est généralement compris entre 12 et 72 heures. L'étape (d) de mesure de l'expression de la DOPAchrome tautomerase pourra être évaluée par exemple par : - Mesure des ARN messagers (ARNm) codant pour la DOPAchrome tautomerase. L'ARNm de TRP-2 peut être identifié par toute méthode permettant de détecter des ARNms telles que RT-PCR, Technique de Northern, differencial display (pour les protocoles de ces méthodes, on se référera à l'ouvrage Maniatis et al., Molecular Cloning: A Laboratory Manual, Joseph Sambrook,E. F. Fritsch,T. Maniatis, Hardcover, Cold Spring Harbor Laboratory Press). Les sondes et les amorces pourront être choisies à partir de séquences connues d'ARNm de la DOPAchrome tautomérase (voir notamment celles décrites dans Genebank n AJ000503, n NM~001922, n S69231). A titre d'exemple, dans le cas d'une analyse par RT-PCR, on pourra utiliser les oligonucléotides suivants : 5' - TGT GGA GAC TGC AAG TTT GGC et 5' - GAG TTC TTC ATT AGT CAC TGG AGG G. - Mesure de la DOPAchrome tautomerase. La protéine TRP-2 peut être détectée par exemple à l'aide de techniques utilisant des anticorps spécifiques (immuno-détection) : Enzymatic Immuno Assay, western blot, immunoprécipitation, immunohistochimie (voir Maniatis et Current Protocols in Molecular Biology F.M.Ausubel et al. Eds, Wiley Interscience) La protéine TRP-2 peut aussi être détectée par une méthode chimique d'analyse de protéines : HPLC, séquençage (voir Maniatis et Current Protocols in Molecular Biology F.M.Ausubel et al. Eds, Wiley Interscience). - Mesure de l'activité de la DOPAchrome tautomerase. Après extraction des cellules ciblées, l'activité de la DOPAchrome tautomérase peut être évaluée par exemple par méthode spectrophotométrique en mesurant la décoloration du L-DOPAchrome à 475 nm (Pawelek JM et al. Nature, 1980; 286 :617-619) ou en mesurant l'augmentation de l'absorbance à 308 nm due à la formation de DHICA (Aroca PF et al. J. Biochem. Biophys. Methods 1990 ; 21 : 35-46) ou bien par méthode HPLC en séparant le DOPAchrome et le DHICA, et en les quantifiant par mesure d'absorption dans les UV (Palumbo A et al. Biochem. Biophys.Acta 1987 ; 925 :203-209). L'invention se rapporte en outre à l'utilisation d'un agent inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomerase susceptible d'être sélectionné par la méthode décrite cidessus dans un procédé de traitement cosmétique pour prévenir et/ou limiter et/ou arrêter le développement de la canitie et/ou pour favoriser la pigmentation naturelle des cheveux et/ou des poils gris ou blancs. L'invention se rapporte aussi à l'utilisation d'un agent inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomerase susceptible d'être sélectionné par la méthode décrite cidessus pour la préparation d'une composition cosmétique destinée à prévenir et/ou limiter et/ou arrêter le développement de la canitie et/ou à favoriser la pigmentation naturelle des cheveux et/ou des poils gris ou blancs. Un dernier aspect de l'invention se rapporte à une méthode d'identification d'un agent inducteur de l'activité du promoteur de la DOPAchrome tautomerase (TRP-2) utilisant des constructions plasmidiques contenant tout ou partie de la région promoteur du gène de la DOPAchrome tautomérase humain ou d'autres mammifères pour évaluer l'activité de composés qui permettraient de favoriser l'expression de la TRP-2. En particulier, la méthode d'identification d'un agent inducteur de l'activité du promoteur de la DOPAchrome tautomerase (TRP-2) comprend les étapes suivantes : a- construction d'un vecteur plasmidique comprenant la région promoteur du gène de la DOPAchrome tautomérase située en amont d'un gène rapporteur ; b- transfert du vecteur plasmidique obtenu à l'étape (a) dans une population de cellules ; c- ajout du composé pour lequel on veut mesurer la capacité à induire l'activation du promoteur de la DOPAchrome tautomerase dans le milieu de culture d'une des deux populations de cellules obtenues à l'étape (b) ; d- sélection des composés induisant l'activité du promoteur de la DOPAchrome tautomerase (TRP-2) par comparaison de l'expression du gène rapporteur dans la population de cellules obtenues à l'étape (c) et avec l'expression du gène rapporteur dans la population de cellules obtenue à l'étape (b) qui n'a pas été incubée avec le composé à tester. Pour la réalisation de l'étape (a), la région promoteur du gène humain codant pour la DOPAchrome tautomérase, par exemple tel que décrit dans Genebank sous la référence L38953, est insérée en amont de la séquence codant pour un gène rapporteur dans une construction permettant le transfert dans une cellule afin de réaliser l'étape (b). On entend par gène rapporteur, un gène dont le produit peut être mesurable, par exemple, le gène de la beta-galactosidase, la luciférase, la Chloramphenicol-acétyltransferase. Pour l'étape (b), la construction permettant le transfert dans une cellule peut être un plasmide tel que pBlue-TOPO# (Invitrogen, Groningen, CH, N) et, dans ce cas, le transfert peut être obtenu par exemple par transfection ou lipofection. La population de cellule utilisée à l'étape (b) peut être une population de cellule de type mélanocyte humain ou d'autres mammifères, ou bien dans un autre type cellulaire tel que le fibroblaste ou le kératinocyte. Enfin, l'invention se rapporte à l'utilisation d'un agent inducteur de l'activité du promoteur de la DOPAchrome tautomérase susceptible d'être identifié par la méthode décrite cidessus dans un procédé de traitement cosmétique pour prévenir et/ou limiter et/ou arrêter le développement de la canitie et/ou pour favoriser la pigmentation naturelle des cheveux et/ou des poils gris ou blancs. L'invention se rapporte aussi à l'utilisation d'un agent inducteur de l'activité du promoteur de la DOPAchrome tautomerase susceptible d'être sélectionné par la méthode décrite ci-dessus pour la préparation d'une composition cosmétique destinée à prévenir et/ou limiter et/ou arrêter le développement de la canitie et/ou à favoriser la pigmentation naturelle des cheveux et/ou des poils gris ou blancs. Figures : Figure 1 : cette figure rassemble différentes photographies représentant la distribution de mélanocytes dans le follicule pileux lors de la phase anagène visualisée au microscope. Légendes : (A) est une série de clichés de la gaine épithéliale externe grossie 40 fois, (B) est une série de clichés de la gaine épithéliale externe (centrés sur la tige) grossie 20 fois et (C) est une série de clichés du bulbe grossie 20 fois. (1) représente un cheveu très foncé, (2) un cheveu modérément pigmenté, (3) à (5) des cheveux de différentes nuances de gris et (6) un cheveu blanc. Figure 2 : Ces photographies permettent de visualiser l'expression de TRP-2 dans les mélanocytes de l'épiderme et du cheveu (gaine épithéliale externe et bulbe pileux). Etude immunohistologique analysée en microscopie confocale laser. Figure 3 : ces photographies représentent les résultats obtenus après la mise en oeuvre des essais de Western Blot décrits à l'exemple 2B. Exemple 1 - révélation immunohistochimiaue des mélanocytes dans les follicules pileux à différents stades de blanchissement, par marquage de la protéine pMel- 17. Plus de 120 follicules pileux isolés à partir de biopsies issues de 8 donneurs âgés de 49 à 71 ans ont été étudiés. A - Protocole d'isolement des follicules pileux entiers (Commo S and Bernard BA Pigment Cell Res 2000 ;13 :253-259) Des fragments de biopsie sont incubés dans la dispase (2,4 U/ml, Boehringer Mannheim, D) la nuit à +04 C. Les cheveux sont ensuite isolés à l'aide de pinces sous binoculaires. B - Protocole d'immunomarquage sur follicules pileux entiers (Commo S and Bernard BA Pigment Cell Res 2000 ;13 :253-259) Les cheveux entiers sont fixés dans l'éthanol à -20 C pendant 10 minutes. Chaque étape des procédures de fixation et de marquage est suivie de lavages au tampon phosphate (pH 7,4 (PBS))-Tween20 0,05%. Sauf précision, toutes les étapes se font à température ambiante. Les péroxydases endogènes de l'échantillon sont neutralisées en incubant l'échantillon dans une solution de péroxyde d'hydrogène à 0,1% pendant 10 minutes. Pour bloquer les sites de fixation non spécifiques, l'échantillon est incubé avec du lait écrémé 1%, 15 minutes. L'anticorps (Ac) primaire NK1-beteb reconnaissant spécifiquement la protéine pMel-17 (Monosan, Paris, F) est dilué au 1/40 dans du PBS Tween 0,05%, contenant 10 % de sérum normal (X0907, DAKO, Trappes, F). L'Ac primaire est incubé 18 heures sur les cheveux à +04 C. L'Ac secondaire couplé à la biotine (E-433, DAKO, Trappes, F) est dilué au 1/400 et incubé 30 minutes. Le cheveu est ensuite incubé en présence de streptavidine-biotine-péroxydase (K-0377, DAKO, Trappes, F), et finalement l'immunomarquage est révélé en présence de 3-amino-9- éthylcarbazole (AEC) (AEC kit-101, Sigma, Saint Quentin Fallavier, F). En comparant les clichés (B1) à (B5) de la figure 1, on constate que la diminution de pigmentation du cheveu est associé à une diminution de mélanine dans le bulbe et à une diminution de mélanocytes dans le bulbe (voir C1 à C5). Le cheveu blanc dont la tige est dépourvue de mélanine (B6) ne contient pas de mélanocyte dans le bulbe (C6). Les cheveux gris et blanc contiennent une quantité variable de mélanocytes dans la partie haute de la gaine épithéliale externe, cette quantité pouvant même être nulle dans le cas du cheveu blanc (A3 à 6) à la différence des cheveux pigmentés (A1 et 2). Exemple 2 - mise en évidence de l'expression différentielle de la DOPAchrome tautomérase dans les mélanocvtes de follicules pileux et de l'épiderme chez l'individu caucasien. A - Etude immunohistoloaiaue analysée en microscopie confocale laser A. 1 - Obtention de coupes congelées de follicule pileux (Commo S and Bernard BA Pigment Cell Res 2000 ;13 :253-259) Un fragment de biopsie de scalp contenant des follicules pileux est inclus dans du tissue-Tek-OCT (Miles, Naperville, IL, USA) et ensuite congelé sur de la carbo-glace. La biopsie congelée est ensuite coupée (7 m à l'aide d'une cryostat (CM3050, Leica, Rueil-Malmaison, F). A. 2 - Protocole d'isolement des follicules pileux entiers et des lambeaux épithéliaux de eau (Commo S and Bernard BA Pigment Cell Res 2000 ;13 :253-259) Des fragments de biopsie sont incubés dans la dispase (2,4 U/ml, Boehringer Mannheim, D) la nuit à +04 C. Le compartiment épithélial est séparé du derme à l'aide de pinces sous binoculaire. Les structures épithéliales sont ensuite micro-disséquées pour séparer les follicules pileux et l'épiderme, puis triées. A. 3 - Protocole d'immunomarauaae sur follicule pileux entier, lambeau de peau et coupe congelée Les cheveux entiers, les lambeaux épithéliaux de peau et les coupes congelées sont fixés dans l'éthanol à -20 C pendant 10 minutes. Chaque étape des procédures de fixation et de marquage est suivie de lavages au tampon phosphate (pH 7,4 (PBS))Tween20 0,05%. Sauf précision, toutes les étapes se font à température ambiante. Les péroxydases endogènes de l'échantillon sont neutralisées en incubant l'échantillon dans une solution de péroxyde d'hydrogène à 0,1% pendant 10 minutes. Pour bloquer les sites de fixation non spécifiques, l'échantillon est incubé avec du lait écrémé 1%, 15 minutes. Les anticorps (Ac) primaires sont dilués dans du PBS - Tween 0,05%, contenant 10 % de sérum normal (X0907, DAKO, Trappes, F). Les Ac primaires NK1beteb reconnaissant spécifiquement la protéine pMel-17 (1/40, Monosan, Paris, F), et aPEP8h (1/2000, Dr VJ.Hearing, NIH, Bethesda, MD, USA) reconnaissant spécifiquement la protéine TRP2 humaine (Virador et al. 2001) sont incubés simultanément 18 heures à +04 C sur les cheveux entiers et les lambeaux épithéliaux de peau, et 30 minutes à température ambiante sur les coupes congelées. L'Ac secondaire de chèvre dirigé contre les immunoglobulines (Ig) G2b couplé à la Cy3 (M32410, TEBU, le Perray en Yveline, F) est dilué au 1/80, et l'Ac secondaire dirigé contre les Ig couplé à la Cy5 (111-175-144, Jackson Immunoresearch Lab. Inc. West Grove, PA, USA) est dilué au 1/500 sont incubés simultanément 30 minutes sur les échantillons. Les immunomarquages sont analysés en microscopie confocale laser (LSM510, Carl Zeiss, Oberkochen, D). Conclusion des observations : sur la figure 2, on constate la présence de TRP-2 dans les mélanocytes de l'épiderme, en revanche, cette enzyme n'est exprimée ni dans les mélanocytes de la gaine épithéliale du follicule pileux, ni dans les mélanocytes du bulbe pileux. B - étude biochimique par analyse en Western Blot B. 1 - Protocole d'extraction de protéine de follicules pileux humain et de mélanocvtes (Commo S et al. Differentiation 2000 ;66 :157-164) - Extraction protéique à partir de follicules pileux : les follicules pileux sont isolés après traitement de biopsies de scalp à la dispase (2,4 U/ml, Boehringer Mannheim, D) la nuit à +04 C. Après isolement, les follicules pileux sont micro-disséqués pour isoler la partie du bulbe pileux. 80 bulbes pileux ainsi isolés sont placés dans un tampon de lyse approprié pour extraction protéique et analyse en Western Blot. - Extraction protéique à partir de culture de mélanocytes : Les mélanocytes cultivés en milieu M2 (PromoCell, Heidelberg, D) sont lysés avec un même tampon de lyse approprié pour extraction protéique et analyse en Western Blot. Le Western blot (voir protocole dans Maniatis et al.) est réalisé avec les anticorps suivants : aPEP8h, anticorps polyclonal spécifique de la TRP-2 humaine donné par Dr VJ Hearing (NIH, Bethesda, USA), et T311, anticorps monoclonal spécifique de la tyrosinase humaine (Novocastra, New Castle, UK). Observations et commentaires de la figure 3 : On observe que la tyrosinase est détectée dans les extraits de bulbe pileux. L'enzyme n'est pas détectée dans les extraits de gaine épithéliale externe. L'expression de la tyrosinase est régulée. Cette enzyme n'est pas ou peu exprimée dans les mélanocytes inactifs (ne produisant pas de mélanine), c'est le cas des mélanocytes contenus dans le scalp inter folliculaire d'individu caucasien. Par ailleurs, la DOPAchrome tautomérase (TRP-2) n'est détectée ni dans les extraits de bulbe ni dans les extraits de gaine épithéliale externe. L'expression de la TRP-2 ne suit pas celle de la tyrosinase et l'induction de la mélanogénèse, elle n'est pas exprimée dans les mélanocytes actifs des bulbes pileux. Exemple 3 - Compositions - lotion capillaire Inducteur de la DOPAchrome tautomérase 0,5 g Propylène glycol 20 g Ethanol 95 30 g Eau qsp 100 g Cette lotion est appliquée quotidiennement sur les zones à traiter et de préférence sur l'ensemble du cuir chevelu pendant au moins 10 jours et préférentiellement 1 à 2 mois. On constate alors une diminution de l'apparition des cheveux blancs ou gris et une repigmentation des cheveux gris. - shampooing traitant Inducteur de la DOPAchrome tautomérase 1,5 g Polyglycéryl 3-hydroxylarylether 26 g Hydroxy propyl cellulose vendue sous la dénomination de Klucell G par la société Hercules 2 g Conservateurs ps Ethanol 95 50 g Eau qsp 100 g Ce shampooing est utilisé à chaque lavage avec un temps de pose d'environ d'une minute. Un usage prolongé, de l'ordre de deux mois, conduit à la repigmentation progressive des cheveux gris. Ce shampooing peut également être utilisé à titre préventif afin de retardé le blanchiment des cheveux. - Gel traitant Inducteur de la DOPAchrome tautomérase 0,75 g Huiles essentielles d'Eucalyptus 1 g Econozole 0,2 g Lauryl polyglyceryl 6 cetearyl glycoether 1,9 g Conservateurs qs Carbopol 934P vendu par la société BF Goodrich Corporation 0,3 g Agent de neutralisation qs pH 7 Eau qsp 100 g Ce gel est appliqué sur les zones à traiter deux fois par jour (matin et soir) avec un massage terminal. Après trois mois d'application, on observe une repigmentation des poils ou cheveux de la zone traitée. REVENDICATIONS 1. Composition cosmétique pour lutter contre la canitie comprenant dans un milieu cosmétiquement acceptable au moins un agent inducteur de l'expression de DOPAchrome tautomérase. 2. Composition selon la revendication 1, caractérisée en ce que la composition comprend un vecteur d'expression codant pour la DOPAchrome tautomérase. 3. Composition selon la revendication 1, caractérisée en ce que l'agent inducteur de DOPAchrome tautomérase est choisi parmi l'hexaméthylène bisacetamide (HMBA), une hormone stéroïdienne, telle que le diethylstilbestrol et/ou l'estradiol, la glycyrrhizine, l'IL1[alpha], un modulateur d'un facteur endogène capable d'activer le promoteur de la DOPAchrome tautomérase (TRP-2) ou un vecteur d'expression codant pour un agent inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomérase. 4. Composition selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisée en ce qu'elle comprend une quantité d'agent inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomerase comprise entre 0,001 et 10 % en poids par volume. 5. Composition selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisée en ce qu'elle est adaptée à une administration orale. 6. Composition selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisée en ce qu'elle est adaptée à une application topique sur le cuir chevelu et/ou la peau. 7. Composition selon l'une quelconque des revendications 1 à 4 ou 6, caractérisée en ce qu'elle est une crème, une lotion capillaire, un shampoing ou un après-shampoing. 8. Composition selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce que l'agent inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomérase est encapsulé dans un enrobage tel que des microsphères, des nanosphères, des oléosomes ou des nanocapsules. 9. Composition selon la revendication 8, caractérisée en ce que l'enrobage dans lequel l'agent inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomerase est encapsulé a un diamètre inférieur ou égale à 10 m. 10. Utilisation d'un agent inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomérase pour protéger les mélanocytes du follicule pileux des agents cytotoxiques. 11. Utilisation d'un agent inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomérase pour prévenir et/ou limiter et/ou arrêter le développement de la canitie. 12. Utilisation d'un agent inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomérase pour favoriser la pigmentation naturelle des cheveux et/ou des poils gris. 13. Procédé de traitement cosmétique de la canitie caractérisé en ce qu'on applique sur la zone à traiter une composition comprenant au moins un agent inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomérase. 14. Procédé de traitement cosmétique destiné à favoriser la pigmentation naturelle des cheveux et/ou des poils gris ou blancs caractérisé en ce qu'on applique sur la zone à traiter une composition comprenant au moins un agent inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomérase. 15. Procédé selon la revendication 13 ou 14, caractérisé en ce que la composition comprend au moins un agent inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomesrase choisi parmi l'hexaméthylène bisacetamide (HMBA), une hormone stéroïdienne, telle que le diethylstilbestrol et l'oestradiol, la glycyrrhizine, l'IL1[alpha], un modulateur d'un facteur endogène situé en amont du promoteur de la DOPAchrome tautomérase (TRP-2) ou un vecteur d'expression codant pour un agent inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomérase (TRP-2). 16. Méthode d'identification d'un agent inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomérase comprenant les étapes suivantes : a- mise en culture d'une population de mélanocytes dans un milieu où les mélanocytes n'expriment pas la DOPAchrome tautomérase ; b- ajout d'un composé pour lequel on souhaite tester l'activité d'inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomérase au milieu de culture ; c- incubation des mélanocytes pendant un temps suffisamment long pour que les mélanocytes puissent exprimer la DOPAchrome tautomérase dans l'hypothèse où le composé est inducteur ; d- mesure de l'expression de DOPAchrome tautomérase ; e- sélection des composés induisant l'expression de DOPAchrome tautomérase. 17. Méthode selon la revendication 16, caractérisée en ce que l'expression de DOPAchrome tautomérase par les mélanocytes est déterminée par la mesure des ARN messagers codant pour la DOPAchrome tautomérase. 18. Méthode selon la revendication 17, caractérisée en ce que la mesure des ARN messagers codant pour la DOPAchrome tautomérase est faite par la technique de RTPCR, la technique de Nothern Blot ou la technique de differential display . 19. Méthode selon la revendication 16, caractérisée en ce que l'expression de DOPAchrome tautomérase par les mélanocytes est déterminée par la mesure de la DOPAchrome tautomérase. 20. Méthode selon la revendication 19, caractérisée en ce que l'expression de la DOPAchrome tautomérase est détectée par la technique Enzymatic lmmuno-Assay, la technique de Western Blot, la technique d'immunoprécipitation, par la technique d'immunohistochimie, par HPLC ou par séquençage. 21. Méthode selon la revendication 16, caractérisée en ce que l'expression de DOPAchrome tautomérase par les mélanocytes est déterminée par la mesure de l'activité DOPAchrome tautomérase dans le milieu de culture. 22. Utilisation d'un agent inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomérase identifié par la méthode selon l'une quelconque des revendications 16 à 21 dans un procédé de traitement cosmétique pour prévenir et/ou limiter et/ou arrêter le développement de la canitie et/ou pour favoriser la pigmentation naturelle des cheveux et/ou des poils gris ou blancs. 23. Utilisation d'un agent inducteur de l'expression de la DOPAchrome tautomerase sélectionné par la méthode selon l'une quelconque des revendications 16 à 21 pour la préparation d'une composition cosmétique destinée à prévenir et/ou limiter et/ou arrêter le développement de la canitie et/ou à favoriser la pigmentation naturelle des cheveux et/ou des poils gris ou blancs. 24. Méthode d'identification d'un agent inducteur de l'activité du promoteur de la DOPAchrome tautomerase (TRP-2), caractérisée en ce qu'elle comprend les étapes suivantes : a- construction d'un vecteur plasmidique comprenant la région promoteur du gène de la DOPAchrome tautomérase située en amont d'un gène rapporteur ; b- transfert du vecteur plasmidique obtenu à l'étape (a) dans une population de cellules ; c- ajout du composé pour lequel on veut mesurer la capacité à induire l'activation du promoteur de la DOPAchrome tautomerase dans le milieu de culture d'une des deux populations de cellules obtenues à l'étape (b) ; d- sélection des composés induisant l'activité du promoteur de la DOPAchrome tautomerase (TRP-2) par comparaison de l'expression du gène rapporteur dans la population de cellules obtenues à l'étape c et avec l'expression du gène rapporteur dans la population de cellules obtenue à l'étape (b) qui n'a pas été incubée avec le composé à tester.