Brevet FR2841557A1 — publié le 20040102

PEPTIDES AYANT UNE AFFINITE POUR UN PHOSPHOLIPIDE ET UTILISATIONS DESCRIPTION DOMAINE TECHNIQUE La présente invention se rapporte à une famille de peptides ayant une affinité pour un phospholipide ainsi qu'à diverses utilisations de ce peptide, notamment dans le domaine pharmaceutique. De manière générale, les peptides de la présente invention sont utiles pour la reconnaissance spécifique de molécules lipidiques. Ils sont utilisables pour l'ingénierie et la création de composés de reconnaissance et de séquestration de lipides notamment de lipides chargés négativement, tels que les phosphatidylsérines, les acides phosphatidiques et lyso-phosphatidiques, les phosphatidylglycérols, les cardiolipines et les sphyngosines-1-phosphates. Les lipides précités jouent un rôle important notamment dans la signalisation cellulaire et peuvent être présents à la surface externe des membranes des cellules et/ou circuler dans le milieu sanguin à la suite d'événements pathologiques très divers. Divers événements cellulaires aboutissent à l'apparition de lipides chargés négativement et notamment de phosphatidylsérines (PS) à la surface externe des cellules, ces événements peuvent résulter soit d'une altération fortuite ou pathologique de la cellule, soit d'un événement cellulaire programmé telle que la mort cellulaire ou apoptose . L' apparition de PS à la surface externe des cellules constitue donc un "message primaire" important témoignant de l'existence d'un dysfonctionnement. Dans le cas du processus de coagulation sanguine, le mécanisme est bien décrit : l'altération des cellules endothéliales des vaisseaux sanguins, soit pour des raisons accidentelles, soit pour des raisons pathologiques plus complexes, provoque l'apparition de ce message PS à la surface externe des cellules en contact avec le milieu sanguin. Ce message est immédiatement reconnu par certaines protéines circulantes qui déclenchent alors une cascade d'événements aboutissant au phénomène de coagulation sanguine bien connu. L'invention tire profit de la propriété des peptides qu'elle fournit de se lier, en présence ou non de calcium, aux lipides et notamment à ceux chargés négativement, pour la mise au point de composés utilisables comme outils de recherche, de diagnostic et de thérapeutique dans le domaine de la reconnaissance des effecteurs lipidiques et de la détection de l'apoptose, des troubles de la coagulation sanguine, du choc septique et des pathologies inflammatoires aiguës en particulier. Concernant la recherche et le diagnostic, les peptides de l'invention peuvent par exemple être couplés à des molécules de détection, par exemple à une molécule fluorescente, à l'un des partenaires du système avidine-biotine, à un radioélément à vie courte, à un composé paramagnétique, à des particules d'or ou de composés denses pour la microscopie électronique. Avec ces molécules de détection, il est possible par exemple de détecter des cellules apoptotiques ou de reconnaître des microdomaines membranaires chargés négativement. Les peptides de la présente invention peuvent donc être utilisés pour une détection " in vitro" de pathologies impliquant l'apparition de charges négatives à la surface des cellules et la libération dans le sang de microvésicules. Les peptides de la présente invention peuvent également être utilisés pour la détection in vivo et l'imagerie des foyers apoptotiques, de zones thrombotiques, et de manière générale de tout centre exposant des lipides chargés négativement, lorsque ces peptides sont couplés par exemple à un radioélément à durée de vie courte (les images scintigraphiques, acquises en tomographie d'émission monophotonique (SPECT pour Single Photon Emission Computed Tomography ) ou en tomographie par émission de positons (PET pour Positron Emission Tomography )) ou à un composé de contraste quelconque tel qu'un complexe de gadolinium pour l'imagerie à résonance magnétique (IRM). Concernant la thérapeutique, de manière générale, les peptides de la présente invention peuvent être utilisés seuls ou couplés à une molécule thérapeutique pour préparer un médicament. Un tel médicament peut par exemple être utilisé pour le ciblage de cette molécule vers des zones présentant des charges négatives telles que des tumeurs présentant des foyers de cellules apoptotiques ou des tumeurs inflammatoires. Les peptides de la présente invention peuvent par exemple être couplés à des molécules à action thrombolytique pour préparer un médicament utilisable dans le traitement et la prophylaxie de la thrombose, ou pour préparer une molécule recouvrant tous les biomatériaux thrombogènes. Les peptides de la présente invention peuvent donc être utilisés pour le ciblage des molécules thrombolytiques au site du thrombus ou vers les zones thrombogènes. Dans un autre exemple d'application de la présente invention, les peptides de l'invention peuvent être utilisés seuls ou couplés à une molécule antiinflammatoire pour préparer un médicament, utilisable par exemple dans des pathologies aiguës comme l'asthme, la rectocolite hémorragique (RCH), la maladie de Crohn, le choc septique, les maladies du collagène et de l'arthrite. D'autres applications apparaîtront encore à l'homme du métier à la lecture de la description qui suit. ETAT DE LA TECHNIQUE Une famille de protéines, appelées annexines, ont été décrites dans l'art antérieur comme présentant un ancrage fonctionnel réversible à la membrane cellulaire, régulé par la concentration en calcium et la présence de phospholipides anioniques. Les annexines constituent une famille de protéines exprimées dans des tissus très divers, aussi bien chez les animaux que chez les plantes. Il semble qu'elles ne sont ni exprimées chez la bactérie, ni chez la levure. La structure des annexines comporte quatre domaines d'environ 70 acides aminés, ou résidus, très moyennement homologues en séquence mais de topologie quasiment identique. Dans le document WO 92/19279, J. TAIT décrit des conjugués ayant une affinité pour des phospholipides. Il décrit en particulier l'utilisation d'une annexine, en particulier de l'annexine V, pour fabriquer un conjugué actif utilisable en tant qu'agent thrombolytique. Malheureusement, le composé décrit dans ce document et préparé à partir de l' annexine entière par un procédé de recombinaison génétique, possède de nombreux inconvénients qui sont notamment un rendement faible, un coût de fabrication élevé. Les inconvénients majeurs sont surtout l'obtention d'un conjugué fragile du fait de sa topologie complexe conduisant à un dépliement irréversible. En outre, ces molécules présentent une toxicité majeur pour le rein et le coeur. Les présents inventeurs ont décrit dans la demande WO-A-00/20453 une première famille de peptides palliant les inconvénients précités et présentant une affinité pour les phospholipides et une stabilité améliorées. EXPOSE DE L'INVENTION La présente invention a pour but de fournir une nouvelle famille de peptides ayant une affinité pour les lipides, en particulier pour les phospholipides, plus spécifique et encore améliorée par rapport aux produits de l'art antérieur. Les peptides de l'invention présentent en outre les avantages d'être plus stables chimiquement que les composés de l'art antérieur et de pouvoir être fabriqués de manière reproductible, avec un rendement élevé et un coût de fabrication très réduit par rapport aux composés de l'art antérieur. Les peptides de la présente invention se caractérisent en ce qu'ils comprennent la séquence peptidique (I) suivante : J1-J2-J3-J4-J5-J6-Z7-U8-J9-J10-U11-Arg-J13-J14-U15-LysGly-X18-Gly-Thr-J21-Glu-J23-J24-U25-J26-J27-J28-U29-J30-J31Arg-J33J34-J35-J36-B37-J38-J39-U40-J41-J42-J43-U44-J45-J46-J47J48-J49-Arg-J51-U42-J53-J54-Asp-U56-Lys-Ser-Z59-Leu-J61-J62- J63 ~J64~Z65 ~J66 ~J67 - U68 ~J69 -J7o ~J71- ~U72 - J73 ~ -J -r74 "u -r75 (1) dans laquelle J, Z, U, X et B représentent des acides aminés tels que : - les acides aminés J sont choisis indépendamment les uns des autres parmi les acides aminés naturels, ou des dérivés de ceux-ci, de telle manière qu'au moins 50% d'entre eux sont des résidus polaires choisis parmi Arg, Asn, Asp, Cys, Gln, Glu, Gly, His, Lys, Orn, Pro, Ser, Thr et Tyr, - les acides aminés U sont choisis parmi Ala, Cys, Gly, Ile, Leu, Met, Phe, Trp, Tyr et Val, - l'acide aminé X18 est choisi indépendamment des autres acides aminés de la séquence parmi Ala, Asn, Cys, Gln, Gly, His, Ile, Leu, Met, Phe, Ser, Thr, Trp, Tyr et Val, - l' acide aminé B37 est choisi indépendamment des autres acides aminés de la séquence parmi Arg, Ala, Cys, Gly, Ile, Leu, Met, Phe, Trp, Tyr et Val, - l'acide aminé Z7 est choisi indépendamment des autres acides aminés de la séquence parmi Asp et Glu, - les acides aminés Z59 et Z65 sont indépendamment Glu, Asp, Lys ou Arg, les exposants des J, Z, U, X et B représentant la position de ces acides aminés dans ladite séquence. La séquence peptidique ci-dessus se replie dans l'espace pour adopter sa conformation tertiaire qui est la forme active du peptide. Les acides aminés 12,15, 16,17, 19,20, 22,50, 55,57, 58,59, 60 et 65 sont les acides aminés, ou résidus, de la présente invention impliqués directement ou indirectement dans la liaison aux lipides, c'est-à-dire qu'ils sont impliqués soit dans la structure tridimensionnelle du peptide pour qu'il adopte sa conformation active permettant de reconnaître un lipide chargé négativement, soit dans le site de reconnaissance du peptide. Les acides aminés J sont les acides aminés, ou résidus, de surface de ce peptide lorsqu'il est dans sa conformation repliée et active. Ces résidus sont disposés dans l'espace de telle sorte qu'ils sont partiellement ou totalement exposés au solvant. Selon la présente invention, ces acides aminés J peuvent être par exemple choisis indépendamment les uns des autres parmi l'ensemble des résidus aminoacides naturels Ala, Arg, Asn, Asp, Cys, Gln, Glu, Gly, His, Ile, Leu, Lys, Met, Orn, Phe, Pro, Ser, Thr Trp, Tyr et Val, et de telle manière que au moins 50% d'entre eux sont des résidus polaires choisis parmi Arg, Asn, Asp, Cys, Gln, Glu, Gly, His, Lys, Orn, Pro, Ser et Thr. Des exemples sont donnés dans la liste de séquences annexée. Les acides aminés U sont les résidus de c#ur de ce peptide. Dans la conformation repliée et active du peptide, ils sont disposés dans l'espace proches les uns des autres et non exposés au solvant. Ils constituent le c#ur hydrophobe de la protéine. L'assemblage compact des atomes de ces résidus joue un rôle prédominant pour la stabilité du peptide dans sa conformation active. Ces résidus peuvent être choisis dans la liste d'acides aminés U décrite ci-dessus. Différents exemples de combinaisons de résidus de c#ur dans le peptide de séquence (I) de la présente invention sont donnés dans le tableau (1) ci-dessous : Tableau 1 U8 U11 U15 U25 U29 B37 U40 U44 U52 U56 U68 U72 Ex a) Val Leu Met Ile Leu Arg Ile Tyr Leu Leu Val Leu Ex b) Ala Ile Ile Ile Leu Arg Ile Tyr Leu Leu Ile Leu Ex c) Ala Ile Ile Ile Leu Arg Ile Tyr Leu Leu Met Val Ex d) Ala Leu Met Leu Leu Arg Ile Tyr Leu Leu Ile Met Ex e) Ala Leu Met Ile Ile Arg Val Tyr Leu Leu Ile Met Ex f) Ala Leu Met Ile Ile Arg Ile Phe Leu Leu Ile Met Ex g) Ala Leu Met Ile Val Arg Ile Phe Leu Leu Ile Phe Ex h) Val Leu Met Ile Leu Arg Ile Phe Leu Leu Ile Met Ex i) Ala Leu Met Ile Leu Arg Ile Phe Leu Leu Ile Met Ex j) Ala Leu Met Ile Leu Arg Ile Tyr Leu Leu Ala Ala Ex k) Val Leu Met Ile Leu Arg Ile Tyr Leu Leu Val Leu Ex 1) Val Leu Met Ile Leu Arg Ile Phe Leu Leu Val Leu (Ex = exemple) Le résidu X18 a pour fonction de maintenir la structure de la boucle Gly-X-Gly dans la forme active du peptide, notamment où les résidus Z59 et Z65 sont des Glu, de moduler le caractère hydrophobe et lipophile de cette boucle, et d'assurer éventuellement des interactions nouvelles spécifiques avec les phospholipides. Ceci est le cas par exemple des résidus Asn, Cys, Ser, Thr, Trp et Tyr. Les résidus Z59 et Z65 peuvent être avantageusement des résidus lysine, ce qui a pour effet de remplacer l'ion calcium par le groupe chargé positivement -NH3+ de la lysine et d'améliorer l'affinité du peptide pour une membrane chargée négativement. Le peptide (I) de la présente invention, dans sa forme active comprend trois sites de liaison à un ion calcium où l'ion calcium complexé par ce site constitue un des ligands d'un phospholipide chargé négativement. Le premier de ces sites, appelé site principal, fait intervenir les résidus 15,18, 19 et 59 en tant que ligands du calcium. Le deuxième de ces sites, appelé site secondaire, fait intervenir les résidus 20 et 22 en tant que ligands du calcium. Le troisième de ces sites, qui est un site secondaire de faible affinité, fait intervenir les résidus 57,60, et 65 en tant que ligands du calcium. Les résidus globalement impliqués dans la liaison aux phospholipides sont les résidus 12,15, 16,19, 20, 22,50, 55,57, 58,59, 60 et 65. Cette liste inclut des résidus impliqués dans les liaisons du calcium, les phospholipides étant des ligands du calcium. Ces résidus peuvent bien entendu être remplacés par des résidus remplissant la même fonction en vue du même résultat conformément à la présente invention. A titre d'exemple, selon l'invention, le peptide de formule (I) peut être avantageusement une séquence peptidique choisie parmi les séquences peptidique ID n 1 à ID n 10 annexées. La séquence (I) représente les peptides de la présente invention dans leur forme fonctionnelle la plus courte. Il est bien entendu que cette séquence peut comprendre en outre, liée à l'extrémité Nterminale et/ou à l'extrémité C-terminale de la séquence (I), un ou plusieurs acides aminés, par exemple de 1 à 15 acides aminés, en général de 1 à 10 acides aminés. De toute préférence, ces acides aminés complémentaires ne modifient pas ou peu l'activité des peptides, ou alors l'améliorent. Par exemple, une petite séquence, appelée cidessous séquence de fonctionnalisation peut être utile notamment pour fixer un marqueur sur le peptide, pour fixer une molécule de traitement de maladies sur le peptide et/ou pour fixer ledit peptide sur un support. La longueur de cette séquence de fonctionnalisation sera adaptée suivant son usage. Bien entendu, celle-ci n'interférera de préférence pas avec l'activité du peptide de la présente invention. L'homme du métier saura facilement adapter la longueur et la nature de cette séquence de fonctionnalisation suivant l'utilisation qu'il fera d'un peptide de la présente invention. Ainsi, selon un premier mode particulier de réalisation de la présente invention, les peptides de la présente invention peuvent comporter, par exemple à leur extrémité N-terminale, une séquence de fonctionnalisation de trois acides aminés. Cette séquence de fonctionnalisation permet une fixation directe d'une molécule de traitement de maladies sur le peptide et/ou la fixation directe dudit peptide sur un support. Les peptides conformes à ce mode de réalisation peuvent être définis par la séquence (II) suivante : J-2-J-1-J0-J1-J2-J3-J4-J5-J6-Z7-U8-J9-J10-U11-Arg-J13-J14-U15- Lys -Gl y- X18 -Gl y- Thr- J21-Gl u - J23 - J24 - U25 - J26 - J27 - J28 - U29 - J30J31-Arg-J33 ~J34 ~J35 ~J36 -B37 ~J38 ~J39 - u4 ~J41~J42~J43 - u44-J45 ~J46- J47-J48-J49-Arg-J51-U52-J53-J54-Asp-U56-Lys-Ser-Z59-Leu-J61J62-J63-J64-J65-J66-J67-J68-J69-J70-J71-U72-J73-J74-J75 (II) dans laquelle J, Z, U, X et B sont tels que définis ci-dessus. Par exemple, J-2 peut être Gly, J-1 peut être Ser, et J peut être Cys, Thr, Pro, Ser, ou Gln. cette séquence J-2J-1-J0 peut être choisie par exemple parmi Gly-Ser-Cys-, Gly-Ser-Thr-, Gly-Ser-Pro-, Gly-Ser-Ser-, Gly-Ser-Gly-, et Gly-Ser-Gln-. Ainsi, par exemple, chacune des séquences IDn l à IDn 10 précitée peut comporter au choix chacune des séquences fonctionnelles précitées. La séquence IDn 12 de la liste de séquences annexée n'est qu'un exemple non limitatif d'une séquences (I) selon la présente invention comportant à son extrémité N-terminale une séquence fonctionnelle de trois acides aminés. Selon un deuxième mode particulier de réalisation de la présente invention, les peptides de séquence (I) peuvent comporter, par exemple à leur extrémité Nterminale, une séquence de fonctionnalisation de quatre acides aminés J-3-J-2J-1-J0 choisie parmi Gly-Ser-GlyCys-, Gly-Cys-Gly-Ser, Gly-Ser-Gly-Ser, Gly-Cys-GlyCys, Gly-Cys-Gly-Ser. Cette séquence de fonctionnalisation est utile par exemple pour une fixation directe d'un marqueur tel que le technétium sur le peptide. Ce mode de réalisation est exposé cidessous. Ainsi, par exemple, chacune des séquences IDn l à IDn 10 précitées peut comporter au choix chacune des séquences fonctionnelles précitées. Les séquences IDn ll de la liste de séquences annexée (plusieurs séquences sont regroupées en une seule sous la dénomination IDn ll) ne sont que des exemples non limitatifs de séquences (I) selon la présente invention comportant à son extrémité N-terminale une séquence fonctionnelle de quatre acides aminés. Selon un troisième mode particulier de réalisation de la présente invention, les peptides de séquence (I) peuvent comporter, par exemple à leur extrémité N-terminale, une séquence de fonctionnalisation de sept à onze acides aminés. Cette séquence de fonctionnalisation est utile par exemple pour une fixation directe d'un marqueur tel que le technétium sur le peptide. Ce mode de réalisation est exposé ci-dessous. Ainsi, par exemple, chacune des séquences IDn l à IDn 10 précitées peut comporter au choix chacune des séquences fonctionnelles précitées. On peut aussi remplacer la séquence Gly-Ser-Gly-Cys des séquences IDn ll à 14 par Gly-Bbl-Gly-Bb2, dans laquelle Bbl et Bb2 sont indépendamment Cys ou Ser. Les séquences IDn 13 et 14 de la liste de séquences annexée (plusieurs séquences sont regroupées en une seule sous la dénomination IDn 13 ou 14) ne sont que des exemples non limitatifs de séquences (I) selon la présente invention. Les peptides de la présente invention ont une affinité suffisante pour le calcium et sont capables de se lier de manière réversible à des effecteurs lipidiques, et notamment à ceux chargés négativement, tel que les phosphatidylsérines, les acides phosphatidiques, les phosphatidyléthanolamines, les phosphatidylglycérols, les cardiolipines et les phosphatidylinositolphosphates. Il s'agit d'une famille de peptides dont la propriété principale est de reconnaître spécifiquement l'apparition des signaux lipidiques à la surface des membranes cellulaires en relation avec le fonctionnement normal ou pathologique des tissus. Les peptides de la présente invention peuvent être synthétisés par les procédés classiques de synthèse de la chimie organique ou de la chimie des protéines, ainsi que par recombinaison génétique in vivo ou in vitro, par génie génétique, etc. Aussi, la présente invention se rapporte également à un procédé de fabrication d'un peptide selon l'invention, ledit procédé comprenant une synthèse chimique en phase solide dudit peptide. La synthèse chimique peut être réalisée par exemple avec un synthétiseur automatique de peptide du type Applied Biosystems, mod. 433A. Elle peut être réalisée par exemple en chimie Fmoc qui utilise le groupement fluoremylméthyloxycarbonyle pour la protection temporaire de la fonction oc-aminique des acides aminés. Les éléments techniques pour la réalisation de ce procédé de synthèse peptidique sont connus de l'homme du métier. Ils sont décrits par exemple dans l'ouvrage Solid-Phase Organic Synthesis de Kevin Burgess (Editor) Wiley-Interscience; ISBN : 0471318256; (February 2000). Le peptide de l'invention peut aussi être fabriqué par recombinaison génétique in vivo par exemple au moyen d'un procédé comprenant les étapes suivantes : a) préparation d'un cDNA comprenant une séquence de base codant pour ledit peptide b) insertion dudit cDNA dans un vecteur d'expression approprié, c) transformation d'une cellule hôte appropriée, avec ledit vecteur dans lequel le cDNA a été inséré, pour une réplication du plasmide, d) fabrication dudit peptide par traduction dudit cDNA dans ladite cellule hôte, et e) récupération du peptide synthétisé. Selon l'invention, le vecteur d'expression approprié et la cellule hôte sont choisis selon les techniques habituelles pour la recombinaison génétique. Le vecteur peut être l'un quelconque des plasmides généralement utilisés dans cette technique, par exemple un plasmide tel que le vecteur pGEX-2T. De même la cellule peut être choisie selon les techniques habituelles, il peut s'agir par exemple de E. Coli. Lorsqu'une technique de recombinaison génétique in vitro est utilisée, les étapes c) et d) du procédé ci-dessus sont remplacées respectivement par les étapes c') d'introduction du vecteur dans lequel le cDNA a été inséré dans un milieu réactionnel adéquat pour une réplication du plasmide, et d') de fabrication dudit peptide par traduction dudit cDNA dans ledit milieu réactionnel adéquat. Le document Jagus, R. and Beckler, G.S. (1998) Overview of eukaryotic in vitro translation and expression systems, Current Protocols in Cell Biology 11.1.1-11.1.13., 1998 by John Wiley & Sons, Inc. décrit des procédés in vitro utilisables dans la présente invention. La présente invention fournit également un assemblage chimique ayant une affinité pour un phospholipide, comprenant au moins deux peptides de la présente invention, identiques ou différents, lesdits peptides étant liés entre eux. Ces assemblages peuvent être réalisés par exemple par insertion d'un lien peptidique flexible, par exemple poly-glycine, entre le résidu C-terminal d'un peptide de l'invention et le résidu N-terminal du second peptide et ainsi de suite selon le nombre de peptides mis bout à bout. Ce lien poly-glycine peut être de formule -(Gly)n-, n étant un nombre entier allant de 1 à 12, par exemple supérieur à 4. Selon l'invention, au moins un des peptides de l'assemblage peut être un peptide comportant une séquence choisie parmi les séquences ID n 1 à 10 de la liste de séquences annexées. Ces assemblages peuvent également être synthétisés par les procédés classiques de synthèse de la chimie organique ou de la chimie des protéines, ainsi que par recombinaison génétique in vivo ou in vitro, par génie génétique, etc., par exemple par un des procédés précités. Ces assemblages ont notamment pour but d'augmenter l'affinité des peptides de la présente invention pour le phospholipide, par exemple pour un phospholipide chargé négativement. L'utilisation d'un assemblage de la présente invention peut se faire dans trois directions : la thérapeutique, la recherche et le diagnostic, et les applications sont très nombreuses. Les pathologies spécialement visées par la présente invention sont : (i) les troubles de la coagulation sanguine, (ii) les phénomènes d'apoptose consécutifs à l'action de composés chimiques, d'effets physiques comme les radiations ionisantes, d'effets biologiques comme ceux liés à la formation ou la nécrose des tissus cancéreux, outre les phénomènes normaux d'apoptose, (iii) les pathologies inflammatoires, et (iv) les troubles associés aux relations entre les cellules et la matrice extracellulaire et notamment le collagène. Les peptides de la présente invention présentent en outre un avantage important par rapport aux composés de l'art antérieur : la réversibilité de leurs processus de repliement qui permet leur manipulation à des températures élevées mais compatibles avec la stabilité chimique des peptides, à des fins de modifications chimiques dans le but de développer des molécules utilisables en imagerie et en thérapeutique. En outre, en raison de leur faible taille, les peptides de la présente invention peuvent être facilement associés à d'autres protéines soit pour former des protéines chimères multifonctionnelles, soit pour introduire un mécanisme de régulation par des effecteurs autres que les phospholipides de signalisation. Les peptides de la présente invention peuvent être utilisés en tant que tels pour fabriquer un médicament utilisable pour un traitement ou pour une prophylaxie car ils possèdent des propriétés anticoagulante et anti-inflammatoire intrinsèques. Ils permettent d'effectuer un tapissage des surfaces cellulaires, capable d'interdire l'accès de composés impliqués dans les étapes primaires de la coagulation sanguine et les phénomènes inflammatoires à ces surfaces. Ainsi, selon l'invention, les peptides ou assemblages de la présente invention peuvent être utilisés en tant que tels pour préparer un médicament, par exemple choisi parmi un médicament destiné au traitement d'une thrombose, un médicament destiné au traitement d'une tumeur, un médicament ayant une action anti-inflammatoire. Les peptides de la présente invention peuvent également être utilisés couplés à des molécules de traitement pour le ciblage de ces molécules vers des zones présentant des charges négatives telles qu'à un site du thrombus, d'une inflammation ou vers une zone tumorale. Dans cette application, les peptides et assemblages de la présente invention sont par exemple couplés respectivement à une molécule qui a une action thrombolytique, à une molécule qui a une action antiinflammatoire ou à une molécule qui a une action antitumorale. Des exemples de molécules ayant une activité thrombolytique utilisables selon la présente invention sont les streptokinases, les urokinases, et les activateurs du plasminogène. D'une façon générale les peptides et assemblages de la présente invention peuvent être couplés indifféremment à des composés proapoptotiques anti-apoptotiques et anti-inflammatoires. Les peptides et assemblages de la présente invention peuvent donc être utilisés couplés à une molécule ayant une activité thrombolytiques pour fabriquer un médicament utilisable dans le traitement et la prophylaxie de la thrombose ; couplés à une molécule ayant une action anti-inflammatoire pour fabriquer un médicament utilisable par exemple par voie locale ou par voie intraveineuse pour traiter des pathologies aiguës comme l'asthme, la RCH, la maladie de Crohn, le choc septique, les maladies du collagène et l'arthrite ; ou couplés à une molécule ayant une action antitumorale pour fabriquer un médicament utilisable pour traiter des tumeurs. Pour une utilisation dans la recherche ou le diagnostique, les peptides de la présente invention peuvent être couplés à une molécule de marquage permettant sa détection. Cette molécule de marquage peut être par exemple une molécule fluorescente, des particules d'or ou de composés denses, de type nanoparticules, pour la microscopie électronique, un radioélément, un composé paramagnétique et de manière générale, une des molécules de marquage couramment utilisées dans les laboratoires. Pour faciliter certains marquages ou liaisons, cette molécule pourra être liée à l'un des partenaires du système avidinebiotine. Selon l'invention, les peptides et les assemblages chimiques selon l'invention peuvent être couplés à une molécule de marquage pour former un composé de marquage utilisable par exemple pour un diagnostique in vivo ou in vitro. En effet, les peptides de la présente invention peuvent être utilisés pour la détection de pathologies impliquant l'apparition de charges négatives à la surface des cellules et la libération dans le sang de microvésicules . par exemple les troubles de la coagulation, les pathologies inflammatoires aiguës, etc. et l'apoptose. Ils peuvent, par exemple, être couplés à des radioéléments à vie courte tels que le technétium ou le fluor 18 et permettre une détection "in vivo" de la localisation des zones thrombotiques lors d'accidents vasculaires de toutes sortes, en particulier des foyers apoptotiques et inflammatoires, en utilisant des systèmes d'imagerie. Les peptides de la présente invention peuvent aussi, par exemple, être couplés à des composés paramagnétiques, tel qu'un complexe de gadolinium, à tout agent de contraste utilisable en imagerie par résonance magnétique (IRM) tel que par exemple un composé paramagnétique ou un composé ferromagnétique, ou à tout élément radioactif à durée de vie courte. Ils peuvent ainsi permettre une détection "in vivo" de la localisation des zones thrombotiques, des zones apoptotiques et inflammatoires. Les couplages précités peuvent être réalisés par toutes les techniques classiques de chimie organique connues de l'homme du métier. Par exemple dans le cas du technétium, ce dernier peut être couplé directement au peptide de la présente invention, par exemple lorsque le peptide de séquence (I) comporte une séquence de fonctionnalisation telles que celles décrites ci-dessus. Ce type de couplage est décrit par exemple dans le document US 6 323 313 de J. F. Tait et al. L'homme du métier comprendra que des marqueurs équivalents au technétium pourront également être couplés de cette manière directement au peptides de la présente invention. Le technétium, ou tout autre métal tels que ceux cités dans la présente, peut aussi être couplé indirectement au peptide de la présente invention. Ce couplage est réalisé par exemple au moyen d'une cage complexant ledit métal. Cette cage peut être fixée au peptides de la présente invention au moyen d'une séquence de fonctionnalisation telles que celles décrites ci-dessus. Dans l'exemple du technétium, des cages à technétium utilisables selon la présente invention sont décrites par exemple dans le document 99mTc Labeling of Highly Potent Small Peptides Shuang Liu, D. Scott Edwards, and John A. Barrett, Bioconjugate Chem. 1997, 8,621-636. Les peptides ou assemblages couplés ou prêts à être couplés, suivant l'application désirée, peuvent être avantageusement conditionnés sous la forme de trousses de diagnostique. Ainsi, la présente invention fournit également une trousse de diagnostic comprenant un peptide ou un assemblage conformes à la présente invention. Cette trousse de diagnostic peut par exemple comprendre en outre un réactif adéquat permettant de détecter ladite molécule de marquage. La présente invention fournit également une trousse d'analyse et de détection de charges négatives à la surface de cellules, caractérisée en ce qu'elle comprend un peptide ou un assemblage chimique de la présente invention, le peptide ou l'assemblage pouvant être couplé à un marqueur. La présente invention fournit également une trousse d'analyse et de détection de microvésicules dans le sang, caractérisée en ce qu'elle comprend un peptide ou un assemblage chimique conformes à la présente invention, le peptide ou l'assemblage pouvant être couplé à un marqueur. Dans une autre application de la présente invention, des peptides ou des assemblages de l'invention peuvent être utilisés, par exemple, pour le recouvrement d'un matériau biocompatible. Ce type de matériau est utilisable dans deux sortes de conditions : i) les circulations extracorporelles, et ii) la conservation du sang. Ainsi, les peptides de la présente invention trouvent une application par exemple pour la fabrication d'un filtre pour le piégeage et la récupération, dans la circulation sanguine extra corporelle de cellules circulantes activées : plaquettes, globules rouges, leucocytes... Le sang réintroduit chez le patient sera ainsi débarrassé des cellules susceptibles de créer des coagulations anormales, des réactions fébriles etc.... Ce filtre peut se présenter sous la forme d'un film plissé de polymère biocompatible sur lequel peuvent être greffé par tout moyen approprié les peptides de la présente invention. Ces mêmes filtres peuvent être introduits dans les poches servant à la conservation du sang ou tapisser l'intérieur de celles-ci. Ces filtres constituent des "éponges" capable de capter en continu les cellules sanguines contenues dans la poche qui sont activées en particulier à la suite de leur vieillissement et de leur engagement dans le processus d'apoptose. Les différents marquages, couplages et fixation exposés ci-dessus, se feront de toute préférence en préservant l'activité du peptide de la présente invention, en général aux extrémités ou au niveau des extrémités du peptide de la présente invention ou sur des résidus de surface. D'autres avantages et caractéristiques de la présente invention apparaîtront encore à la lecture des exemples illustratifs et non limitatifs qui suivent, en référence aux figures en annexe. BREVE DESCRIPTION DE LA LISTE DE SEQUENCES - Les séquences IDn l à IDn 14 annexées sont des exemples de peptides comportant la séquence peptidique (I) et (II) de la présente invention. En, particulier, les séquences IDn ll, IDn 13 et IDn 14 sont des exemples de peptides comportant la séquence peptidique de la présente invention dans lesquels des mutations ont été introduites pour augmenter l'affinité pour le calcium et les phospholipides. BREVE DESCRIPTION DES FIGURES - Les figures 1 et 2 sont des micrographies obtenues à partir de coupes de tissus respectivement d'un c#ur apoptotique (figure 1) et d'un rein (figure 2) . Ces coupes ont été obtenues d'une part (clichés de gauche) avec des peptides AFIM-fluorescéine (AFIM-F) de la présente invention, d'autre part (clichés de droite) avec de l'annexine 5 -fluorescéine (A5-F) (composé de l'art antérieur) : microscopie de fluorescence, grossissement x 40.' Les clichés du centre ont été obtenus avec de l'hématoxyline : microscope en lumière visible, grossissement x 40. Sur la figure 1, les photos du haut et du bas représentent différentes coupes du c#ur. - La figure 3 est un graphique qui représente le taux d'hélicité H (en %) d'un peptide selon la présente invention en fonction de la température t en C. EXEMPLES Exemple 1 : Synthèse par recombinaison génétique : Expression et purification des peptides de séquences ID n 1 à ID n 12 de la présente invention Les séquences ID n 1 à ID n 14 ont été préparées par surexpression dans E. Coli selon le même protocole que celui qui a été décrit par F. Cordier-Ochsenbein et al. dans J. Mol. Biol. 279,1177-1185. Les cDNA de chacune de ces séquences ont été préparés en utilisant une réaction de polymérase en chaîne (PCR). Ils ont été insérés dans le vecteur pGEX- 2T (Smith & Jonhson, 1998). La figure 2 est un schéma illustrant l'insertion du cDNA dans le vecteur. L'absence de mutations induites par la PCR a été contrôlée par séquençage. La production des peptides est effectuée en utilisant la souche E. Coli BL21 contenant le vecteur d'expression décrit plus haut. Après induction par l'isopropylthiogalactopyranoside (IPTG, 100 um) jusqu'à une densité optique de 1 à 600 nm, la pousse est continuée jusqu'à ce qu'un plateau soit atteint, c'est- à-dire pendant environ 3 heures. Après centrifugation, les bactéries sont re-suspendues dans le tampon de lyse comprenant 50 mM Tris-HCl, pH 8, 10 mM EDTA, 500 mM NaCl, 5% (v/v) glycérol, 1% (v/v) Triton X100,1 mM dithiothréitol (DTT), 1 mM fluorure de phénylméthylsulfonyl (PMSF) et 20 ug/ml d'aprotinine. La purification a été effectuée de la façon suivante : après sonication et centrifugation à 10000 g, le surnageant contenant les protéines solubles est incubé avec des billes de glutathion/agarose permettant la liaison spécifique à ces billes de la protéine de fusion GST-domaine. Après lavage avec une solution contenant 1 M NaCl, 50 mM Tris-HCl à pH 8,70 unités de thrombine par litre de culture sont ajoutés et les séquences sont éluées. Les séquences sont alors purifiées sur une colonne proRPC (marque de commerce) de type 16/10, fournie par la société Pharmacia en utilisant un système FPLC et un gradient linéaire d'eau de qualité Millipore (marque de commerce) contenant 0,1% (v/v) d'acide trifluoroacétique TFA, et d'acétonitrile contenant 0,1% de TFA. La vitesse d'écoulement est ajustée à 2,5 ml/minute. Les séquences sont ensuite lyophilisées. Le rendement final pour chaque peptide est d'environ 8 mg de séquence par litre de culture. Exemple 2 : Exemple de synthèse chimique de peptides de la présente invention Les peptides de la présente invention ont été fabriqués dans cet exemple par synthèse chimique en phase solide avec un synthétiseur automatique de peptides Applied Biosystems, mod. 433A, et en chimie Fmoc, qui utilise le groupement Fluorénylméthyloxycarbonyle (Fmoc) pour la protection temporaire de la fonction a-aminique des acides aminés. Les groupements protecteurs utilisés pour prévenir les réactions secondaires des chaînes latérales des acides aminés, dans cette stratégie Fmoc, ont été le tertio-butyle éther (tBu) pour les résidus Ser, Thr et Tyr ; tertio-butyle ester (OtBu) pour Asp, Glu ; trityle (Trt) pour Gln, Asn, Cys, His ; tertio-butyloxycarbonyle (Boc) pour Lys et 2,2,5,7,8-pentamétylchromane-6-sulfonyle (Pmc) pour Arg. La réaction de couplage se déroule avec un excès de 10 équivalents d'acides aminés (1 mmol) par rapport à la résine (O,lmmol). L'acide aminé protégé est dissous dans 1 ml de N-méthylpyrollidone (NMP) et 1 ml d'une solution de 1-N-hydroxy-7-azabenzotriazole (HOAt) 1M dans le solvant NMP. 1 ml d'une solution de N,N'-dicyclohexylcarbodiimide (DCC) 1M est alors ajouté. Après 40 à 50 minutes d'activation, l'ester actif formé est transféré dans le réacteur qui contient la résine. Avant cette étape de transfert puis de couplage, la résine est déprotégée de son groupement Fmoc par une solution de 20 % de pipéridine dans le NMP. L'excès de pipéridine est enlevé par lavage à la NMP après 5 à 10 minutes environ. Pendant la déprotection, la détection des adduits dibenzofulvène-pipéridine à 305 nm permet de suivre le bon déroulement de la synthèse. En effet, la quantification de l'adduit permet d'estimer l'efficacité de la déprotection du groupement Fmoc et par suite du couplage du dernier acide aminé incorporé. Le clivage de la résine et des groupements protecteurs présents sur les chaînes latérales a été réalisé simultanément par traitement du peptide lié à la résine par de l'acide trifluoroacétique (TFA). Avant d'effectuer le clivage, la résine a été lavée plusieurs fois au dichlorométhane (DCM) et enfin séchée. Le réactif utilisé lors du clivage est un mélange acide contenant 81,5 % de TFA et les piégeurs phénol (5 %), eau (5 %), éthanedithiol (2,5% lorsque le peptide comporte une cystéine) et tri-isopropylsilane (1 %). La résine a été traitée avec ce mélange pendant trois heures sous agitation et à température ambiante, à raison de 100 ml de solution par gramme de résine. Le peptide libre en solution a été récupéré par filtration. Le peptide a été ensuite précipitée et lavée à froid dans l'éther de diisopropyle puis dissous dans de l'acide acétique à 20 % et lyophilisée. Le peptide récupéré après lyophilisation, le brut de synthèse, se trouve sous forme réduite, c'est à dire que les ponts disulfures inter-chaînes ne sont pas formés. Le peptide est alors purifié sur une colonne proRPC (marque de commerce) de type 16/10, fournie par la société Pharmacia en utilisant un système FPLC et un gradient linéaire d'eau de qualité Millipore (marque de commerce) contenant 0,1% en volume d'acide trifluoroacétique TFA, et d'acétonitrile contenant 0,1% de TFA. La vitesse d'écoulement est ajustée à 2,5 ml/minute. Le peptide est ensuite lyophilisé. Les produits obtenus ont été analysés par spectrométrie de masse. Exemple 3 : Stabilité des séquences ID n 1 à IDn 14 Cet exemple montre que les peptides de la présente invention constituent des protéines de repliement stables. Composition du blanc (témoin): Tris 50 mM, NaCl 150 mM, DTT 1 mM pH8 10 uL H20 990 L Ajusté à pH8 Composition de l'échantillon : Echantillon : domaine purifié dans tampon Tris 50 mM, NaCl 150 mM, pH8 Concentration aprox. : 200 mg. ml. Domaine : 10 uL soit 300 M final. H20 . 990 L. pH mesuré à 7,8. Configuration matérielle et logicielle : Appareil Jobin Yvon CD6. Logiciel CD-max Trajet optique de la cuvette de mesure : 1 cm. La figure 1 annexée représente le taux d'hélicité de AFIM en fonction de la température tel qu'il est mesuré à l'aide du signal de dichroïsme circulaire dans l'UV lointain à la longueur d'onde de 220 nm. Sur cette figure, la valeur du signal à 14 C est prise pour le 100% du contenu en hélice du peptide. La dénaturation thermique du peptide est bien coopérative et démontre qu'à basse température et notamment à 37 C il s'agit d'un peptide convenablement replié et présentant une stabilité améliorée. Exemple 4 : Assemblages de deux peptides de la présente invention Le procédé décrit dans l'exemple 1 ci-dessus est utilisé pour synthétiser une séquence peptidique de séquence IDn 1-(gly)4-IDn 1. Le rendement final pour l'assemblage est d'environ 14 mg/litre de culture. Exemple 5 : Marquage d'un peptide de la présente invention par la fluorescéine Dans les exemples qui suivent, le peptide de la présente invention est appelé AFIM-SH. Il a une séquence peptidique telle que définie par la séquence (I). Les séquences IDn l à IDn 14 sont testées. La fluorescéine est une molécule qui émet une fluorescence verte d'une longueur d'onde de 525 nm lorsqu'elle est excitée à une longueur d'onde de 488 nm. L'émission de lumière verte est détectée par des caméras ou des photomultiplicateurs. Ce couplage d'AFIM à la fluorescéine permet de détecter la présence des cellules présentant la PS aussi bien in vitro que in vivo chez des petits animaux. Selon la présente invention, il est possible de marquer AFIM au niveau des résidus de surface sur toute cystéine qui serait introduite à la place de n'importe quel acide aminé présent à la surface d'AFIM (résidus de surface) pour autant que la fonction de liaison aux membranes lipidiques ne soit pas perturbée. AFIM ainsi modifié est désigné AFIM-SH ci-dessous. Le couplage de la fluorescéine se fait par l'intermédiaire d'une fonction maléimide représentée ci-dessous sur AFIM par la fonction SH. La fluorescéine est couplée à une ou plusieurs cystéine(s) de la séquence, de manière covalente, en utilisant une fonction maléimide. Schéma général du marquage (schéma I): Tout le marquage se fait à une température inférieure à 20 C. AFIM-SH est en solution dans du tampon Tris (50 mM), NaCl (150 mM), pH = 7. 4. 5 équivalents de DTT en solution dans le même tampon sont additionnés à la solution de AFIM-SH. Le milieu est agité durant 30 min. A l'abri de la lumière : lafluorescéine (5 équivalents d'AFIM-SH + 2 équivalents de DTT) est pesée et dissoute dans du DMF, et additionnée à la solution précédente. Le tout est agité, et la réaction est poursuivie 30 min. Puis le milieu est dilué dans 150 ml de tampon PBS (Phosphate 20 mM, NaCl 150 mM), pH = 7.4, et ultra-filtré sur membrane YM3 (marque de commerce). L'échantillon est re-dilué et ultra-filtré plusieurs fois, en faisant le spectre UV du filtrat. Lorsqu'il n'y a plus de fluorescéine dans le filtrat (pic à 490 nm), l'échantillon est concentré à quelques ml et conservé au frais à 4 C. Les produits AFIM-Fluorescéine ont été employés pour détecter des cellules apoptotiques en cytométrie de flux in vitro, ainsi que chez des animaux in vivo de la manière décrite dans l'exemple 6 suivant. Exemple 6 Résultats de marquages de cellules apoptotiques par les produits AFIM-Fluorescéine Imagerie de cellules cardiaques apoptotiques après un infarctus chez le rat. Un modèle d'apoptose chez le rat est utilisé comme il est décrit dans l'article paru dans Circulation Res. 1996,79, 946-956. Brièvement, quatre rats (300 g chacun) ont été anesthésiés, intubés et ventilés. L'ischémie du myocarde fut provoquée par une occlusion temporaire de l'artère coronaire. Après 30 minutes d'occlusion, l'artère coronaire fut re-perfusée pendant une heure. A la fin de la période de re-perfusion, les peptides AFIM-Fluorescéine de l'exemple 5 ont été injectés dans la veine jugulaire à raison de 200 g de peptide pour chacun de deux des rats dans un volume total de 1 ml. A titre comparatif, 200g d'annexine 5Fluorescéine (composés de l'art antérieur) ont été injectés dans les mêmes conditions pour chacun des deux autres rats dans un volume total de 1 ml. Les rats ont été sacrifiés après 60 minutes. Cinq organes ont été conservés pour cette étude: le c#ur, le poumon, le rein, le foie et le cerveau. Il ont été lavés et rincé en présence de formol. Les organes ont ensuite été déshydratés et imprégnés de paraffine pendant environ 12 heures puis des coupes de 7 m furent effectuées. Quelques coupes furent colorées à l'hématoxyline. Les coupes ont été examinées au microscope à fluorescence et les coupes adjacentes colorées à l'hématoxyline furent examinées avec un microscope en lumière visible. Les coupes colorées à l'hématoxyline (marquées Hl et H2 respectivement sur les figures 1 et 2 annexées) permettent une visualisation de l'architecture des tissus et la microscopie de fluorescence de détecter le marquage par AFIMFluorescéine (AFIM-F) ou par l'annexine 5-Fluorescéine (A5-F) . La figure 1 annexée montre les images obtenues pour le c#ur apoptotique et la figure 2 annexée montre les images obtenues pour le rein. La figure 1 montre clairement l'excès de fluorescence correspondant à l'accumulation de marqueur au niveau des cellules apoptotiques. Le contraste est visiblement bien meilleur avec AFIM de la présente invention qu'avec l'annexine 5 de l'art antérieur. La figure 2 montre le marquage du rein lié à l'élimination partielle des produits. Dans le cas de AFIM les glomérules ne semble pas marqués, seule les tubules proximaux sont partiellement marqués. Par contre dans le cas de l'annexine 5 de l'art antérieur l'ensemble du tissus rénal est fortement marqué, ce qui est en accord avec la toxicité rénale observée pour cette protéine. Les résultats obtenus dans cet exemple démontrent une grande spécificité des peptides de la présente invention pour le marquage des cellules. Le marquage du peptide AFIM, par exemple de IDn l à 10, par la fluorescéine permet donc de détecter efficacement la phosphatidylsérine (PS) présente à la surface externe des cellules impliquées dans des processus physiopathologiques comme la mort cellulaire programmée (apoptose) la coagulation du sang, la réaction inflammatoire. Exemple 7 : Marquage d'un peptide de la présente invention par le technétium 99mTc Le marquage d'AFIM par le 99mTc permet, comme pour la fluorescéine, de détecter la phosphatidylsérine (PS) présente à la surface externe des cellules impliquées dans des processus physiopathologiques comme la mort cellulaire programmée (apoptose), la coagulation du sang, la réaction inflammatoire. Le 99mTC est un émetteur de rayons y qui permet une détection d'AFIM dans toute zone du corps par différents types de caméras détectant les rayonnements y. Ce couplage d'AFIM au 99mTc permet de détecter la présence des cellules présentant la PS in vivo chez tout être vivant. Deux types de marquage au technétium sont exposés dans cet exemple : un marquage indirect (A) et un marquage direct (B). A) MARQUAGE INDIRECT Dans cet exemple, AFIM-SH est couplé, au niveau d'une cystéine de sa séquence, à une molécule complexante appelée molécule cage, capable de recevoir de manière spécifique l'ion 99mTc. La réaction de couplage est schématisée ci-dessous (schéma II). La molécule cage choisie est le NH2-C3(Bham)2 (2) décrit dans le document suivant: Bis(Hydroxamamide)Based Bifunctional Chelating Agent for 99mTc Labelling of Polypeptides, Le-Cun Xu et al. Bioconjugate Chem. 1999, 10,9-17. Cette cage est couplée au dérivé maléimide (1) selon le schéma (II) pour donner le marqueur (3) qui est ensuite couplé à AFIM-SH pour donner le composé nommé AFIM-cage (Schéma (II)). Le couplage est effectué de la façon suivante: AFIM-SH est en solution dans du tampon Tris (50 mM), NaCl (150 mM), pH = 7. 4. 5 équivalents d' hydrochlorure de tris-(2-carboxyéthyl)-phosphine (TCEP) sont pesés, dissous dans le même tampon et additionnés à AFIM-SH. Le milieu est agité et laissé à température ambiante durant 30 minutes. Pendant ce temps, 10 équivalents de (1) sont mis en solution dans du diméthylformamide (DMF) et transférés sur 20 équivalents de cage (2) dans le même volume de DMF. Après 10 min de réaction, le produit est ajouté à AFIM-SH. Le tout est agité, et la réaction est poursuivie 30 min à température ambiante. Puis le milieu est dissous dans 150 ml de tampon Tris (50 mM), NaCl (150 ml), pH = 7. 4, et ultra-filtré sur membrane YM3 (marque de commerce). L'échantillon est re-dilué et ultra-filtré plusieurs fois, en faisant le spectre UV du filtrat. Lorsqu'il n'y a plus de DMF dans le filtrat (pic à 214 nm), l'échantillon est concentré à quelques ml et conservé au frais (4 C). Schéma (II) Une quantité adaptée à la taille de l'animal, du peptide couplé à la cage à technétium (AFIM-cage) préparé dans cet exemple, est prélevée et une solution aqueuse de SnCl2 (6 équivalents par rapport au peptide) est ajoutée. La solution de 99mTc04 - est aj outée et la réaction est poursuivie 30 minutes à température ambiante. La solution de peptide marqué (AFIM-cage-99mTc) est ensuite directement injectée par voie intraveineuse à l'animal. Les images sont alors recueillies au moyen d'une caméra capable de détecter des rayons y (SPECT ou autre caméra). B) MARQUAGE DIRECT Dans cet exemple, AFIM est marqué au technétium sans cage. Pour cela, AFIM est doté d'une séquence de fonctionnalisation de quatre acides aminés qui fixent directement le technétium. La séquence peptidique IDn ll est utilisée dans cet exemple. La séquence de fonctionnalisation est GlySer-Gly-Cys du côté N-terminal, les résidus 5 à 79 de la séquence IDn ll étant ceux formant le séquence (I) de la présente invention. Pour le marquage, le peptide de séquence IDn ll et 5 équivalents de TCEP sont mis en solutions dans du sérum physiologique et équilibrés pendant 15 mn. On ajoute ensuite 10 équivalents de SnCl2. Cette solution peut être lyophilisée et conservée sous azote. Le marquage est effectué en ajoutant une solution de 99mTcO4-. Après une incubation de 15 minutes, la solution est passée sur une colonne PD10 (marque de commerce). La séquence IDn ll marquée directement au technétium (AFIM-99mTc) est injectée par voie intraveineuse. Les images sont alors recueillies avec une caméra telle que celle utilisée ci-dessus. Exemple 8 : Marquage d'un peptide de la présente invention avec du gadolinium AFIM couplé au gadolinium : AFIM-cage-Gd (marquage indirect) . Le marquage d'AFIM par le gadolinium permet, comme pour les précédents marqueurs, de détecter la phosphatidylsérine (PS) présente à la surface externe des cellules impliquées dans des processus physiopathologiques comme la mort cellulaire programmée (apoptose), la coagulation du sang, la réaction inflammatoire. Le gadolinium est un agent paramagnétique qui permet une détection d'AFIM dans toute zone du corps par des procédés d'imagerie par résonance magnétique nucléaire. Ce couplage d'AFIM au gadolinium permet de détecter avec une résolution pouvant aller jusqu'au mm la présence des cellules présentant la PS in vivo chez tout être vivant. Comme pour la fluorescéine, AFIM peut être couplée, au niveau d'une cystéine, à une molécule chimique capable de recevoir de manière spécifique l'ion gadolinium. Une fois cette cage à gadolinium construite, le couplage est réalisé avec AFIM comme décrit ci-dessous. AFIM-SH est en solution dans du tampon Tris (50 mM), NaCl (150 mM), pH = 7. 4. 5 équivalents de TCEP sont pesés et dissous dans le même tampon et additionnés à AFIM-SH. Le milieu est agité et laissé à T.A. durant 30 min. La cage à gadolinium utilisée est celle décrite dans le document P. KANTHI, et al. ; Synthesis of Charged and Uncharged Complexes of Gadolinium and Yttrium with Cyclic Polyazaphosphinic Acid Ligands for in vivo Applications , J.CHEM SOC. PEKIN TRANS. 2, 1993, pp.605-618. 5 équivalents de cage, par rapport à AFIM-SH, sont dissoutes dans du DMF, et ajoutés à AFIM-SH. Le tout est agité, et la réaction est poursuivie 30 min à T.A. Puis le milieu est dissous dans 150 ml de tampon Tris (50 mM), NaCl (150 nM), pH = 7. 4, et ultra-filtré sur membrane YM3. L'échantillon est re-dilué et ultrafiltré plusieurs fois, en faisant le spectre UV du filtrat. Lorsqu'il n'y a plus de DMF dans le filtrat (pic à 214 nm), l'échantillon est concentré à quelques ml et conservé au frais à 4 C. Le produit, une fois purifié est injecté par voie intraveineuse. Les images sont recueillies au moyen d'une caméra de détection. Exemple 9 : Marquage d'un peptide de la présente invention avec de l'or Le marquage d'AFIM par l'or est un marquage direct. Il permet de détecter la phosphatidylsérine (PS) présente à la surface externe des cellules impliquées dans des processus physiopathologiques comme la mort cellulaire programmée (apoptose) la coagulation du sang, la réaction inflammatoire. L'or est un métal dense aux électrons et permet son usage en microscopie électronique. Ce couplage d'AFIM à l'or permet de détecter et de localiser la phosphatidylsérine à l'échelle de la cellule et des compartiments sub-cellulaires. Le produit couplé peut être utilisé in vitro. AFIM-SH est mis en solution dans du tampon Tris (50 mM), NaCl (150 mM), pH = 7. 4. 5 équivalents de tris-(2-carboxyéthyl)-phosphine (TCEP) en solution dans le même tampon sont additionnés à AHM-SH. Le milieu est agité durant 15 min. Des billes d'or modifiées (contenant un maléimide greffé : Nanogold Monomaléimide Interchim (marque déposée)) sont dissoutes dans 20 pl de DMSO et 200 l d'eau ; et additionnées à la solution précédente (2 équivalents de billes par rapport à la protéine). Le tout est agité, et la réaction est poursuivie une heure. Puis le milieu est purifié sur colonne de gel filtration (PD-10 Pharmacia (marque de commerce)) et élué avec du tampon PBS (Phosphate 20 mM, NaCl 150 mM), pH = 7.4 AFIM-Au est utilisable sur des coupes de tissus ou sur des cellules isolées. L'analyse peut se faire par microscopie électronique. REVENDICATIONS 1. Peptide caractérisé en ce qu'il comprend la séquence peptidique (I) suivante : J1-J2-J3-J4-J5-J6-Z7-U8-J9-J10-U11-Arg-J13-J14-U15-LysGly-X18-Gly-Thr-J21-Glu-J23-J24-U25-J26-J27-J28-U29-J30-J31- Arg-J33 ~J34 ~J35 ~J36 -B37 ~J38 ~J39 - U40 ~J41~J42 ~J43 - U44 ~J45 ~J46 ~J47- J48-J49-Arg-J51-U52-J53-J54-Asp-U56-Lys-Ser-Z59-Leu-J61-J62- J63 ~ J64 ~ Z6s ~ J6s ~ J67 ~U69 ~ Js9 ~ J7o ~ J71 ~U72 ~ J73 ~ J74 ~ J7s ( I ) dans laquelle J, Z, U, X et B représentent des acides aminés tels que : - les acides aminés J sont choisis indépendamment les uns des autres parmi les acides aminés naturels, ou des dérivés de ceux-ci, de telle manière qu'au moins 50% d'entre eux sont des résidus polaires choisis parmi Arg, Asn, Asp, Cys, Gln, Glu, Gly, His, Lys, Orn, Pro, Ser, Thr et Tyr, - les acides aminés U sont choisis parmi Ala, Cys, Gly, Ile, Leu, Met, Phe, Trp, Tyr et Val, - l'acide aminé X18 est choisi indépendamment des autres acides aminés de la séquence parmi Ala, Asn, Cys, Gln, Gly, His, Ile, Leu, Met, Phe, Ser, Thr, Trp, Tyr et Val, - l'acide aminé B37 est choisi indépendamment des autres acides aminés de la séquence parmi Arg, Ala, Cys, Gly, Ile, Leu, Met, Phe, Trp, Tyr et Val, - l'acide aminé Z7 est choisi indépendamment des autres acides aminés de la séquence parmi Asp et Glu, - les acides aminés Z59 et Z65 sont choisis indépendamment parmi Glu, Asp, Lys ou Arg, les exposants des J, Z, U, X et B représentant la position de ces acides aminés dans ladite séquence. 2. Peptide selon la revendication 1, dans lequel les acides aminés J sont choisis indépendamment les uns des autres parmi Ala, Arg, Asn, Asp, Cys, Gln, Glu, Gly, His, Ile, Leu, Lys, Met, Phe, Pro, Ser, Thr Trp, Tyr et Val de telle manière que au moins 50% d'entre eux sont des résidus polaires choisis parmi Arg, Asn, Asp, Gln, Glu, Gly, His, Lys, Pro, Ser et Thr. 3. Peptide selon la revendication 1, dans lequel les acides aminés U et B de la séquence (I) sont choisis suivant un des exemples a) à j) exposés dans le tableau 1 suivant : U8 Ull U15 U25 U29 B37 U40 U44 U52 U56 U68 U72 Ex a) Val Leu Met Ile Leu Arg Ile Tyr Leu Leu Val Leu Ex b) Ala Ile Ile Ile Leu Arg Ile Tyr Leu Leu Ile Leu Ex c) Ala Ile Ile Ile Leu Arg Ile Tyr Leu Leu Met Val Ex d) Ala Leu Met Leu Leu Arg Ile Tyr Leu Leu Ile Met Ex e) Ala Leu Met Ile Ile Arg Val Tyr Leu Leu Ile Met Ex f) Ala Leu Met Ile Ile Arg Ile Phe Leu Leu Ile Met Ex g) Ala Leu Met Ile Val Arg Ile Phe Leu Leu Ile Phe Ex h) Val Leu Met Ile Leu Arg Ile Phe Leu Leu Ile Met Ex i) Ala Leu Met Ile Leu Arg Ile Phe Leu Leu Ile Met Ex j) Ala Leu Met Ile Leu Arg Ile Tyr Leu Leu Ala Ala Ex k) Val Leu Met Ile Leu Arg Ile Tyr Leu Leu Val Leu Ex 1) Val Leu Met Ile Leu Arg Ile Phe Leu Leu Val Leu (Ex = exemple) 4. Peptide comportant une séquence choisie parmi les séquences IDn l à IDn 10 de la liste de séquences annexée. 5. Peptide comportant la séquence IDn l de la liste de séquence annexée. 6. Peptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 5, comprenant en outre, liée à l'extrémité N-terminale de la séquence (I), une séquence d'acides aminés choisie parmi Gly-Ser-Cys-, Gly-Ser-Thr-, Gly-Ser-Pro-, Gly-Ser-Ser-, Gly-Ser-Gly-, et Gly-Ser-Gln-. 7. Peptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 5, comprenant en outre, liée à l'extrémité N-terminale de la séquence (I), une séquence d'acides aminés Gly-Ser-Gly-Cys-, Gly-Cys-GlySer, Gly-Ser-Gly-Ser, Gly-Cys-Gly-Cys, Gly-Cys-Gly-Ser. 8. Peptide comportant la séquence IDnoll ou IDn 12 de la liste de séquences annexée. 9. Peptide comportant la séquence IDn 13 ou IDn 14 de la liste de séquences annexée. 10. Procédé de fabrication d'un peptide selon l'une quelconque des revendication 1 à 9, ledit procédé comprenant une synthèse chimique en phase solide dudit peptide 11. Procédé de fabrication en culture d'un peptide selon l'une des revendications 1 à 9, ledit procédé comprenant les étapes suivantes : a) préparation d'un cDNA comprenant une séquence de base codant pour ledit peptide b) insertion dudit cDNA dans un vecteur d'expression approprié, c) transformation d'une cellule hôte appropriée, avec ledit vecteur dans lequel le cDNA a été inséré, pour une réplication du plasmide, d) fabrication dudit peptide par traduction dudit cDNA dans ladite cellule hôte, et e) récupération du peptide synthétisé. 12. Procédé selon la revendication 11, dans lequel le vecteur est un plasmide. 13. Procédé selon la revendication 11, dans lequel le vecteur est le vecteur pGEX-2T. 14. Procédé selon la revendication 11,12 ou 13, dans lequel la cellule hôte est E. Coli. 15. Assemblage chimique ayant une affinité pour un phospholipide, caractérisé en ce qu'il comprend au moins deux peptides tels que définis dans les revendications 1 à 9, identiques ou différentes, lesdits peptides étant liés entre eux. 16. Assemblage chimique selon la revendication 15, dans lequel au moins un des peptides est un des peptides définis dans la revendication 4. 17. Utilisation d'un peptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 9 pour le recouvrement d'un biomatériau. 18. Utilisation d'un peptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 9 dans la fabrication d'un filtre pour le piégeage de cellules sanguines circulantes activées. 19. Composé de marquage comprenant un peptide tel que définie dans l'une quelconque des revendications 1 à 9 couplé à une molécule de marquage ou à des nanoparticules denses en microscopie électronique. 20. Composé de marquage caractérisé en ce qu'il comprend un assemblage tel que défini dans la revendication 15 ou 16 couplé à une molécule de marquage ou à des nanoparticules denses en microscopie électronique. 21. Composé selon la revendication 19 ou 20 dans lequel la molécule de marquage est une molécule fluorescente. 22. Composé selon la revendication 19 ou 20 dans lequel la molécule de marquage est constituée d'un des partenaires du système avidine-biotine. 23. Composé selon la revendication 19 ou 20 dans lequel la molécule de marquage est un radioélément. 24. Composé selon la revendication 19 ou 20 dans lequel la molécule de marquage est un agent de contraste en imagerie à résonance magnétique. 25. Composé selon la revendication 19 ou 20 dans lequel la molécule de marquage est du technétium. 26. Composé selon la revendication 19 ou 20 dans lequel les nanoparticules denses en microscopie électronique sont des nanoparticules d'or. 27. Trousse de diagnostic comprenant un composé selon l'une quelconque des revendications 19 à 20. 28. Trousse de diagnostic selon la revendication 27, comprenant en outre un réactif adéquat permettant de détecter ladite molécule de marquage. 29. Trousse d'analyse et de détection de charges négatives à la surface de cellules, caractérisée en ce qu'elle comprend un peptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 9. 30. Trousse d'analyse et de détection de charges négatives à la surface de cellules, caractérisée en ce qu'elle comprend un assemblage selon la revendication 15 ou 16. 31. Trousse d'analyse et de détection de microvésicules dans le sang, caractérisée en ce qu'elle comprend un peptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 9. 32. Trousse d'analyse et de détection de microvésicules dans le sang, caractérisée en ce qu'elle comprend un assemblage selon la revendication 15 ou 16. 33. Trousse selon la revendication 29 ou 31, dans laquelle le peptide est couplé à un marqueur. 34. Trousse selon la revendication 30 ou 32, dans laquelle l'assemblage est couplé à un marqueur. 35. Filtre de dialyse de cellules sanguines circulantes activées, ledit filtre étant caractérisé en ce qu'il comprend un peptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 9.