Brevet FR2836146A1 — publié le 20030822

La présente invention se rapporte au domaine de la biologie et concerne plus particulièrement un nouveau variant d'immunoglobuline IgG3 isolée et/ou purifiée, utile comme marqueur de protection de maladies virales infectieuses telles le SIDA, et comme outil de diagnostic ou comme médicament préventif et curatif. Le SIDA est un problème de santé publique extrêmement grave et préoccupant pour beaucoup de pays dans le monde. Ainsi aux USA par exemple, le nombre de cas de SIDA déclarés dépasse les 100 000 et le nombre de personnes infectées a été estimé à plus de un million. La propagation de la maladie est accentuée du fait du nombre de porteurs chroniques du virus responsable du SIDA qui restent asymptomatiques pendant de nombreuses années, sinon leur vie entière, et sont donc des sources de contamination non identifiées. Cette maladie, transmissible par voies sexuelle et sanguine affecte le système immunitaire de l'hôte, favorisant ainsi l'apparition d'infections opportunistes ou de pathologies contre lesquelles un système immunitaire sain aurait protégé l'hôte. Lorsque le SIDA est déclaré, la mort survient généralement deux à trois ans après le diagnostic suite à un effondrement des défenses immunitaires du patient et à de multiples infections opportunistes. H est très difficile de classer les virus du SIDA vu l'extrême variabilité génétique et antigénique dont ils font preuve ; on admet classiquement qu'il existe deux types de virus responsables du SIDA humains : HIV-1 et HIV-2 (pour human immunodeficiency virus). Pour de multiples raisons, le mécanisme de réplication de HIV pose de nombreux problèmes pour l'obtention d'une thérapie efficace. En effet, l'ADN proviral de par son intégration dans le génome cellulaire se comporte comme un élément génétique de l'hôte. D'autre part, le virus HIV est disséminé à travers tout le corps dans les lymphocytes T, les monocytes, les macrophages ainsi que dans le système nerveux central. Enfin, le virus HIV possède une variabilité antigénique extrêmement importante. Les diverses thérapies curatives employées actuellement en clinique consistent pour l'essentiel soit à bloquer l'activité de la reverse transcriptase, soit à inhiber l'activité d'enzymes virales indispensables pour l'infection ou la réplication (protéases, intégrases). L'efficacité de ces thérapies reste limitée dans la mesure où l'absorption de ces antiviraux entraîne des effets secondaires. De plus, compte tenu du fort taux de mutation du virus HIV, celui-ci devient rapidement résistant aux drogues, tels l'AZT et aux autres analogues nucléotidiques durant la thérapie. L'émergence de résistants rend nécessaire l'augmentation des doses thérapeutiques administrées aux patients. L'échec des thérapies curatives actuelles nécessite donc le développement de nouvelles stratégies thérapeutiques pour combattre l'infection rétrovirale. Dans leur recherche de développement de nouvelles stratégies curatives, les inventeurs ont été amenés à étudier les populations séropositives infectées par le HIV et nonprogresseurs c'est-à-dire ne développant pas de SIDA. Ils ont ainsi pu mettre en évidence pour la première fois que chez ces patients séropositifs infectés par le HIV et qualifiés de non-progresseurs, il existe une variante particulière d'IgG3. Les inventeurs ont mis en évidence que cette variante d'IgG3 diffère par sa structure primaire de poids moléculaire plus faible, sa demi-vie plus longue ainsi que par sa concentration sérique plus élevée que les IgG3 classiques. L'immunoglobuline IgG3 mise en évidence par les inventeurs, isolée et purifiée, apparaît comme un marqueur de protection pour le SIDA ainsi que comme un agent neutralisant de l'agent causal de cette maladie. Les immunoglobulines IgG humaines se répartissent en quatre sous-classes (IgGl, IgG2, IgG3, IgG4) qui diffèrent par des différences mineures dans la structure primaire de leur chaîne lourde. Les principales différences concernent la région charnière et le nombre de ponts disulfure inter-chaînes. Ainsi la région charnière de l'IgG3 est très longue ce qui rend compte de son poids moléculaire plus élevé (170 kDa) et de certaines propriétés biologiques telles que la demi-vie (en jours) qui est beaucoup plus courte pour les immunoglobulines IgG3 (7 jours) que pour les autres sous-classes d'IgG qui ont une demi-vie de l'ordre de 20 jours. Les IgG3 sont capables de se lier sélectivement à certains récepteurs au fragment Fc des immunoglobulines tel que RFcyI, RFcylIa, RFcyilla. Les immunoglobulines dont la fonction première est de lier l'antigène pour le neutraliser, ont également comme rôle d'activer des fonctions effectrices secondaires notamment par la voie du complément. Le système du complément qui est un groupe complexe de protéines sériques intervenant dans les réactions inflammatoires est un des mécanismes effecteurs le plus important pour les IgGl, IgG3 et les IgGM humaines. Après avoir lié l'antigène, les IgGl, les IgG3 et les IgGM peuvent en effet activer la cascade enzymatique de la voie classique du complément appelée Clq, les IgG2 quant à elles étant peu efficaces, les IgG4 en étant incapables. La liaison de Clq à l'immunoglobuline est la première étape dans la cascade du complément qui conduit à la lyse cellulaire. Ce mécanisme est particulièrement important pour combattre les maladies infectieuses et virales telles le SIDA par exemple et joue un rôle déterminant dans la destruction des cellules infectées. Les travaux réalisés par les inventeurs permettent donc de répondre à un besoin urgent, à savoir la nécessité de développer des nouveaux médicaments ou compositions préventives et/ou curatives destinées à neutraliser le virus du SIDA, ainsi qu'à développer de nouveaux tests de diagnostic permettant d'adapter la thérapie en fonction du sérotype du patient. La présente invention a donc pour objet une immunoglobuline humaine de classe IgG3 purifiée et/ou isolée, ou l'un de ses fragments, ayant les caractéristiques suivantes (i) une durée de vie dans le sérum du patient supérieure à la durée de vie des IgG3 normalement présente dans le sérum humain et notamment d'au moins 15 jours de préférence d'au moins un mois, (ii) une chaîne lourde dont le poids moléculaire, déterminé par mobilité électrophorétique, est inférieur au poids moléculaire des IgG3 normalement présentes dans le sérum humain (60kDa), la dite chaîne lourde ayant un poids moléculaire d'environ 50 kDa et comprenant le site de fixation du complément. Cette réduction du poids moléculaire apparant déterminée par électrophorèse reflète soit une diminution de la longueur de la structure primaire de l'IgG3, soit une conformation tridimensionnelle différente, soit une diminution des modifications post-traductionnelles telles par exemple la glycosylation de la chaîne lourde. L'immunoglobuline IgG3 variante selon l'invention dans le sérum se caractérise enfin par une concentration sérique supérieure à la concentration d'IgG3 d'un sérum normal d'au moins une fois, d'au moins deux fois, en général d'au moins trois fois, ce qui représente une concentration sérique de cette nouvelle IgG3 variante d'environ lu/1. Selon un mode de réalisation de l'invention, l'immunoglobuline variante IgG3 est isolée et/ou purifiée à partir des patients séropositifs pour le HIV ; ces patients étant nonprogresseurs, c'est-à-dire des personnes infectées par la VIH depuis plusieurs années sans perte de défenses immunitaires donc asymptomatiques. De manière plus préférée, l'immunoglobuline IgG3 selon l'invention lie sélectivement l'épitope R7V de la protéine gpl60 du virus HIV-1, le dit épitope comprenant la séquence Arg-Thr-Pro-Lys-Ile-Gln-Val. Dans la présente description, les termes immunoglobulines et anticorps seront employés indifféremment. Par épitope, on entendra désigner tout déterminant de la protéine responsable de l'interaction spécifique avec l'anticorps ; les épitopes consistent habituellement en des groupes de molécules présentant des surfaces chimiquement actives telles que des acides aminés ou des chaînes latérales de sucres et ayant une structure tridimentionnelle spécifique et/ou une charge spécifique caractéristique. Les procédés d'isolement et/ou de purification des immunoglobulines, les méthodes pour déterminer la longueur de la chaîne lourde des immunoglobulines ainsi que les procédés de détermination de la durée de vie des IgG3 dans le sérum sont connues de l'homme du métier travaillant dans le domaine de l'immunologie. A titre d'illustration, différents procédés et protocoles pouvant être mis en oeuvre sont décrits dans Current Protocols in Immunology"mise à jour annuellement (4volumes) édités par le"National Institutes of Health"par John E. Coligan, Ada M. Kruisbeek, David H. Margulies, Ethan M. Shevach, Warren Strober-Wiley Interscience. A titre illustratif, la purification des IgG3 de la présente invention est réalisée en utilisant des colonnes d'immuno-affinité Hitrap TM Protein G HP (réf. 17-0404-01) et Hitrap TM Protein A HP (réf. 17-0402-01) de chez Amersham-Pharmacia. Après le passage du sérum/plasma sur la colonne Hitrap TM protein A HP qui fixe uniquement les IgG1, IgG2 et IgG4, le sérum/plasma épuisé en IgG1, IgG2 et IgG4 est passé sur la colonne Hitrap TM Protein G HP pour purifier les IgG3 La détermination du poids moléculaire des chaînes lourdes et légères des IgG est réalisée par exemple par électrophorèse sur un gel de polyacrylamide 12% (Ready Gel TrisHCI glycine BIORAD réf. 161-0901). Brièvement, les IgG3 purifiées sur colonne d'immunoaffinité sont réduits par chauffage 3 minutes à 95 C en présence de tampon réducteur (Laemmli sample Buffer BIORAD réf. 161-0737 +ss mercaptoéthanol) puis chargées sur le gel. La migration s'effectue en 40 minutes à 200 V, 35 mA. Les gels sont colorés par une solution commerciale (Bio-Safe Coomassie BIORAD, réf. 161-0786). Enfin, la détermination de la durée de vie des IgG3 variantes est réalisée par un test ELISA réalisé chaque mois ou chaque trimestre dans le sérum ou plasma de patients non progresseurs permettant de confirmer la présence d'IgG3. Par isolement de l'immunoglobuline IgG3 variant selon l'invention on couvre également la préparation d'anticorps monoclonal de type IgG3 variant. Pour la préparation d'anticorps monoclonaux ou leurs fragments, on pourra se référer aux techniques qui sont en particulier décrites dans le manuel Antibodies (Harlow et al., 1988) ou à la technique de préparation à partir d'hybridomes décrite par Kohler et Milstein en 1975. Les anticorps monoclonaux selon l'invention peuvent être obtenus par exemple à partir de cellule d'un animal immunisé contre la protéine gpl60, ou un de ses fragments, et comportant l'épitope R7V. La purification de l'anticorps selon l'invention pourra par exemple être réalisée sur une colonne d'affinité sur laquelle a préalablement été immobilisée l'antigène ou l'épitope cible, par exemple l'épitope R7V de la protéine gpl60 du HIV. Le concept inventif à la base de l'invention ne se réduit pas aux seules immunoglobulines IgG3 purifiées et/ou isolées de patient affectés du SIDA. En effet, le type d'immunoglobulines IgG3 variant mises en évidence par les inventeurs sont exprimées également dans le sérum de patients affectés d'autres pathologies impliquant une infection virale. Parmi ces pathologies impliquant une infection par les virus, on peut citer à titre d'exemples non exhaustifs les pathologies associées aux virus de la leucémie des cellules T humaines (HTLV), le cytomégalovirus (CMV), les virus de l'herpès (HSV-1, HSV-2), le virus d'Epstein-Barr (EBV), les virus de l'hépatite (HBV, HCV). L'invention concerne également les immunoglobulines IgG3 variant isolées et/ou purifiées à partir d'un patient affecté de maladie infectieuse à évolution variable comme les maladies neurologiques telles la sclérose en plaque, les maladies cutanées telles le psoriasis, les maladies auto-immunes telles le lupus érythémateux disséminé, les cancers d'origine rétroviral tels le cancer du sein inflammatoire familial. L'invention couvre également les fragments d'immunoglobuline IgG3 variant. Les fragments d'anticorps selon l'invention comprennent tout fragment dudit anticorps capable de se fixer sur l'épitope de la protéine sur lequel se fixe l'anticorps dont ledit fragment est issu. Des exemples de tels fragments incluent en particulier les anticorps simple chaîne ou des fragments monovalents Fab ou Fab'et les fragments divalents tels que F (ab') 2, qui possèdent la même spécificité de fixation que l'anticorps dont ils sont issus. Un fragment selon l'invention pourra également être un fragment Fv simple chaîne. Des fragments d'anticorps de l'invention peuvent être obtenus à partir d'immunoglobulines selon l'invention par des méthodes telles que la digestion par des enzymes, comme la pepsine ou la papaïne et/ou par clivage des ponts disulfures par réduction chimique. Alternativement, après séquençage de la structure primaire de l'IgG3 variant selon l'invention, les fragments d'anticorps peuvent être synthétisés par des synthétiseurs automatiques de peptides tels que ceux fournis par la société Applied Biosystems par exemple. La présente invention concerne également des anti-séra comportant l'immunoglobuline selon l'invention. L'homme du métier a, à sa disposition, les outils de biologie moléculaire et cellulaire pour réaliser le clonage, le séquençage, et l'expression par voie recombinante des immunoglobulines IgG3 variantes (Sambrook et al. 1989 ; Coligan et al., Current Protocols in Immunology voir page 4). Ces IgG3 recombinantes, également dans la portée de la présente invention, pourront ainsi être produites in vitro et facultativement modifiées par la technologies de l'ADN recombinant ou de la chimie pour leur conférer des propriétés particulières. Suivant les applications diagnostic désirées, l'anticorps selon l'invention ou un de ses fragments peut être immobilisé sur un support. L'immobilisation ou couplage peut être réalisée sur de nombreux supports connus de l'homme de l'art. Cette immobilisation ou couplage est réalisée de préférence sur un support solide directement ou indirectement par l'intermédiaire d'un bras d'espacement. Les supports solides peuvent notamment inclure le verre, le polystyrène, le polypropylène, le polyéthylène, le dextran, le nylon, ou des celluloses naturelles ou modifiées. Ces supports peuvent être soit solubles ou insolubles. Pour d'autres applications, l'anticorps selon l'invention ou un de ses fragments peut être marqué directement ou indirectement par un marqueur de façon à obtenir un conjugué permettant de générer un signal détectable et/ou quantifiable utilisable pour le diagnostic in vivo ou in vitro. Le kit de diagnostic correpondant comprenant l'anticorps marqué, ou l'un de ses fragments marqué est également un des objets de la présente invention. Le marqueur peut être sélectionné parmi les enzymes, les colorants, les haptènes, les agents luminescents tels que les agents radioluminescents, chémiluminescents, bioluminescents, fluorescents, phosphorescents, les ligands tels que la biotine, l'avidine, la streptavidine, la digoxygénine, les isotopes radioactifs. Ainsi, l'immunoglobuline selon l'invention ou l'un de ses fragments est conjuguée par exemple avec des enzymes telles que la péroxydase, la phosphatase alkaline, la ss-D-galactosidase, la glucose oxydase, la glucose amylase, l'anhydrase carbonique, l'acétyl-cholinestérase, le lysozyme, la malate déhydrogénase ou la glucose-6 phosphate déhydrogénase ou par une molécule comme la biotine, la digoxigénine ou la 5bromo-désoxyuridine. Des marqueurs fluorescents peuvent être également conjugués à l'immunoglobuline ou l'un de ses fragments selon l'invention et incluent par exemple la fluorescéine et ses dérivés, la rhodamine, le rouge Texas, le dansyl, l'umbelliférone, et les protéines autofluorescentes telles la GFP (GFP pour Green Fluorescent Protein ) etc.. D'autres conjugués peuvent inclure également des marqueurs chemiluminescents tels que le luminol et les dioxétanes ou des marqueurs bioluminescents tels que la luciférase et la luciférine. Parmi les isotopes radioactifs pouvant être fixés sur l'immunoglobuline ou un de ses fragments selon l'invention, on préfère également les marqueurs radioactifs tels que 14C, "Cl,"Co,"Co,"Cr, Eu,"Fe,'H,'"I,'"I,"P,"S,"Se et""Te qui peuvent être détectés par des moyens connus tels que le compteur gamma ou à scintillations, par autoradiographie, etc.. La présente invention comprend également les conjugués dont le marqueur détectable est choisi parmi les marqueurs pouvant être utilisés dans l'application imagerie in vivo. Des exemples de tels marqueurs selon l'invention sont 72As, Cu,"Ga, 67Ga, 68Ga,1, 1251, 13lI,'"m, Ru,""Te, 'Tl et 89Zr. L'invention inclut également les isotopes paramagnétiques utilisés dans l'imagerie par résonance magnétique (IRM) et qui incluent notamment 52Cr, 162Dy, 56Fe, 157Gd et 55Mn. Le terme imagerie in vivo doit être entendu dans la présente description comme toute méthode permettant la détection d'un anticorps marqué selon la présente invention ou un de ses fragments qui se fixe spécifiquement sur l'épitope de la protéine d'intérêt dans le corps du patient. Le patient sera de préférence un homme susceptible de présenter des cellules infectées par un virus ou atteint d'une maladie infectieuse à évolution variable exprimant de manière anormale la protéine d'intérêt. De tels conjugués peuvent être préparés par des méthodes connues de l'homme de l'art. Ils peuvent être couplés aux marqueurs directement ou par l'intermédiaire d'un groupe fonctionnel intermédiaire, d'un groupe espaceur ou d'un groupe de liaisons tel qu'un polyaldéhyde, comme le glutaraldéhyde, l'acide éthylènediaminetétraacétique (EDTA), l'acide diéthylènetriaminepentaacétique (DPTA), ou en présence d'agents de couplage tels que le périodate, la benzoquinone etc.. Les conjugués comportant des marqueurs de type fluorescéine peuvent être préparés par réaction avec un iso-thiocyanate. C'est également un des objet de la présente invention de fournir un procédé de diagnostic et/ou de dosage in vitro d'une pathologie sélectionnée parmi les infections virales et les maladies infectieuses à évolution variable, comprenant les étapes de (i) mise en contact d'un échantillon de fluide corporel et/ou de tissu corporel provenant d'un patient chez lequel on suspecte la présence de la dite pathologie avec une immunoglobuline, un fragment d'immunoglobuline ou un antisérum selon l'invention ; et (ii) de détection de la présence d'un complexe immun entre la dite immunoglobuline et un épitope spécifique de la dite pathologie. Par fluide corporel, ou fluide biologique, on entend désigner des fluides tels le sérum, le sang total, l'urine, le sperme, les cellules, un échantillon de tissu ou des biopsies d'origine humaine. Les méthodes de détection du complexe immun sont multiples et connues de l'homme de l'art ; elles dépendent de la nature du diagnostic et du dosage à effectuer. Il peut s'agir de test ELISA, RIA, d'une méthode sandwich, d'une immuno-précipitation, d'un test d'agglutination, d'un test par compétition, ou tout test connu de l'homme de l'art dépendant de la formation d'un complexe immun anticorps-antigène. A titre d'exemple, une méthode préférée met en jeu des processus immuno-enzymatiques selon la technique ELISA, par immunofluorescence, ou radio-immunologique (RIA) ou équivalent. Toutes ces méthodes reposent de préférence sur la fixation des immunoglobulines en cause sur des peptides antigéniques puis par la mise en évidence de cette fixation. Plus particulièrement, l'invention couvre également un procédé de diagnostic et/ou de dosage in vitro du syndrome d'immunodéficience humaine (SIDA) comprenant les étapes de (i) mise en contact d'un échantillon de fluide corporel et/ou de tissu corporel provenant d'un patient chez lequel on suspecte la présence du HIV avec une immunoglobuline, un fragment d'immunoglobuline ou avec un antisérum selon l'invention et, (ii) de détection de la présence d'un complexe immun entre la dite immunoglobuline et la protéine gpl60 du HIV, et notamment l'épitope R7V de cette protéine contenu dans le dit échantillon. L'invention concerne également un procédé in vitro ou in vivo de traitement de fluide biologique d'un patient affecté d'une pathologie sélectionnée parmi les infections virales, notamment le HIV, et les maladies infectieuses à évolution variable, le dit procédé comprenant l'étape de mettre en contact une quantité efficace d'immunoglobuline, d'un fragments d'immunoglobulines ou d'un antisérum selon l'invention, avec le dit fluide biologique, de sorte à neutraliser un épitope spécifique de la pathologie dans le dit fluide. Le procédé comprend en outre éventuellement l'étape additionnelle d'éliminer du mélange récationnel le complexe immun ainsi formé. Dans le cadre d'un procédé in vitro de traitement du fluide biologique, le procédé peut comprendre en outre l'étape additionnelle de réinjecter au patient tout ou partie du fluide biologique ainsi traité. Par neutralisation du virus HIV par exemple, on entendra désigner tout mécanisme ayant pour effet in vivo de détruire et/ou d'empêcher la propagation des virus. L'immunoglobuline variant d'IgG3 selon l'invention apparaît compte tenu de son sous type G3 et de sa stabilité, constituer un excellent moyen pour neutraliser tout fluide corporel destiné à être réinoculé ou réintroduit chez un individu, comme le sang d'un homme HIV séropositif pour la transfusion sanguine d'un individu, un tissu d'un homme HIV séropositif dans le cas d'une greffe tissulaire, ou le sperme d'un homme HIV séropositif pour l'insémination d'une femme séronégative. En effet, le sous-type IgG3 fixant le complément, les immunoglobulines selon l'invention induisent la lyse des cellules infectées. Selon un mode particulier de réalisation, l'invention fournit un procédé in vitro de neutralisation de cellules infectées par le HIV dans une échantillon biologique de fluide corporel et/ou de tissu corporel provenant d'un patient séropositif. Ce procédé comprend les étapes suivantes de : (i) combiner de manière simultanée, séparée ou étalée dans le temps l'immunoglobuline ou un des ses fragments, ou l'antisérum selon l'invention avec l'échantillon biologique contenant les cellules infectées par le HIV présentant la protéine gpl60 à leur surface et avec de la protéine G attachée à des particules magnétiques ; (ii) Incuber le mélange obtenu en (i) dans des conditions permettant la fixation de la dite immunoglobuline sur la protéine gp160, et de préférence sur l'épitope R7V, pour former un complexe, le dit complexe comprenant le dit anticorps lié à une cellule infectée par le HIV fixé sur cette particule magnétique ; (iii) Déplacer cette particule magnétique vers un endroit prédéterminé du récipient contenant ce mélange réactionnel, tel que le déplacement est accompli par un champ magnétique agissant sur la dite particule magnétique. L'invention couvre également un procédé in vitro de diagnostic de patient nonprogresseur affecté d'une pathologie sélectionnée parmi les infections virales, notamment le SIDA et les maladies infectieuses à évolution variable caractérisé en ce que l'on détecte de préférence par un test immunologique la présence d'immunoglobuline IgG3 ayant les caractéristiques suivantes (i) une durée de vie dans le sérum du patient supérieure à celle des IgG3 normalement présente, et notamment d'au moins 15 jours, de préférence d'au moins un mois ; (ii) une chaîne lourde dont le poids moléculaire, déterminé par mobilité électrophorétique, est inférieur au poids moléculaire des IgG3 normalement présentes dans le sérum humain (60kDa), la dite chaîne lourde ayant un poids moléculaire d'environ 50 kDa et comprenant le site de fixation du complément., et (iii) facultativement ayant une concentration sérique supérieure d'au moins une fois, d'au moins deux fois, d'au moins trois fois (soit lg/1) à la concentration d'IgG3 d'un sérum normal. Le test de diagnostic utilisé est de préférence choisi parmi un test ELISA, RIA, une méthode sandwich, une immunoprécipitation, un test d'agglutination. Ce diagnostic de détection de la variante IgG3 selon l'invention présente un intérêt considérable. En effet, les patients séropositifs dans le cas du HIV et porteurs de cette variante d'IgG3 sont non-progresseurs. Dans ce cas le diagnostic est très favorable et il est possible d'éviter des traitements thérapeutiques lourds. Ceci est particulièrement vrai dans le cas d'une grossesse où la présence de ces anticorps chez la mère (HIV+) semblerait conduire à une non-infection du nouveau-né. La présente invention vise donc à utiliser l'immunoglobuline IgG3 variante ou l'un de ses fragments ou l'antisérum selon l'invention comme un marqueur de protection dans les pathologies sélectionnées parmi les maladies virales, notamment le SIDA et les maladies infectieuses à évolution variable. Plus généralement, la présente invention vise à couvrir l'utilisation d'une immunoglobuline, ou l'un des ses fragments, ou d'un antisérum selon l'invention pour la réalisation d'un test immunologique choisi parmi le test ELISA, le test RIA, la méthode sandwich, l'immuno-précipitation, le test d'agglutination. La présente invention vise également à couvrir la mise en oeuvre de l'immunoglobuline selon l'invention à titre de médicament, et plus précisément comme anticorps thérapeutique ou comme agent de ciblage. Par anticorps thérapeutique, on entend désigner des immunoglobulines IgG3 ou un sérum, plasma le contenant, injectées par voie veineuse à des patients progresseurs et généralement en échec de thérapie classique. L'immunoglobuline IgG3 variant ou l'antisérum la contenant est utile à la préparation de médicament destiné au traitement thérapeutique et/ou prophylactique d'une maladie virale, notamment le SIDA, mais également des maladies dont l'agent causal est un virus tel que listé précédemment. Lorsque la maladie est le SIDA, l'immunoglobuline IgG3 variant utilisée pour la préparation d'un médicament destiné à neutraliser chez un homme affecté du SIDA la protéine gpl60 de HIV est de préférence dirigée contre l'épitope R7V de la protéine gpl60 du HIV. L'immunoglobuline IgG3 variant ou l'antisérum la contenant est également utile à la préparation de médicament destiné au traitement thérapeutique et/ou prophylactique d'une maladie infectieuse à évolution variable. L'immunoglobuline IgG3, ou l'un de ses fragments selon l'invention, peut être mise en oeuvre comme médicament sous la forme d'un mélange avec au moins un agent antirétroviral choisi parmi le groupe composé des inhibiteurs de la reverse transcriptase et/ou des antiprotéases virales comme produit de combinaison pour une utilisation simultanée, séparée ou étalée dans le temps en thérapie antivirale. L'inhibiteur de la reverse transcriptase est de préférence choisi parmi le 3'-azido-3'déoxythymidine (AZT), le 2', 3'-didéoxyinosine (ddI), le 2', 3'-didéoxycytidine (ddC), le (-) 2', 3'-didéoxy-3'-théacytidine (3TC), le 2', 3'-didéhydro- 2', 3'didéoxythymidine (d4T) et le (-) 2'-déoxy-5-fluoro-3'-théacytidine (FTC), le TIBO, le HEPT, le TSAO, l'a-APA, la névirapine, le BAHP, l'acide phosphonoformique (PFA) ; l'antiprotéase virale est choisie parmi l'indinavir et le saquinavir. Dans le cadre d'une mise en oeuvre de l'anticorps comme agent de ciblage, celui-ci est éventuellement modifié par les technologies de la chimie et/ou de l'ADN recombinant, pour modifier sa stabilité, son affinité, sa bio-disponibilité ou sa compatibilité etc... L'immunoglobuline selon l'invention comme agent de ciblage est conjuguée directement ou indirectement à au moins un agent sélectionné parmi le groupe des agents antiprolifératifs, antinéoplastiques ou cytotoxiques. Parmi les agents qui peuvent être conjugués aux anticorps selon l'invention sont inclus, outre les radio-isotopes et les marqueurs précédemment décrits notamment, les composés alkylants tels que la méchloréthamine, la triéthylène phosphoramide, la triaziquone, la camustine, la sémustine, le méthotrexate, la mercaptopurine, la cytarabine, le fluorouracile, les antibiotiques tels que l'actinomycine, les hormones ou les antagonistes d'hormones tels que les corticostéroïdes, comme la prednisone ou les progestines, les toxines bactériennes ou virales. Dans un mode particuler de réalisation, l'agent antiprolifératif et/ou antinéoplasique et/ou cytotoxique non isotopique est une molécule d'acide nucléique telle par exemple de l'ADN simple brin, de l'ADN double brin, de l'ARN simple brin, notamment un ARN antisens, de l'ARN double brin, un hybride ARN/ADN. Cet acide nucléique code facultativement pour un produit protéique d'intérêt. Il entre également dans la portée de l'invention de fournir une vaccin ou une composition pharmaceutique pour le traitement ou la prévention d'une pathologie sélectionnée parmi les infections virales et les maladies infectieuses à évolution variable comprenant une immunoglobuline anticorps ou un antisérum selon l'invention en association avec un transporteur, un excipient ou un diluant pharmaceutiquement acceptable. Les excipients pharmaceutiquement acceptables incluent notamment l'eau, les solutions salines, les tampons ou tout autre composé décrit par exemple dans l'Index de Merck. Les compositions ou vaccin selon l'invention peuvent comporter également des composants augmentant l'immunogénicité, notamment des adjuvants d'immunité spécifiques ou non tels que l'adjuvant de Freund, des polysaccharides ou des composé équivalents. Il s'agit là de composés connus par l'homme du métier dans le domaine de la vaccination. Les compositions peuvent être sous une forme quelconque compatible avec la voie d'administration choisie. L'administration de ces composés au patient peut être locale ou systémique et accomplie par voie intraveineuse, intra-artérielle, intra-musculaire, intrapéritonéale, par l'intermédiaire du liquide spinal, par voie intradermique, par voie orale, nasale, anale.. Toutefois les compositions selon la présente invention pourront être utilisées par d'autres voies, notamment par voie aérosol, pour induire une protection des muqueuses. La quantité d'immunoglobulines IgG3 variant, ou l'un de ses fragments, comprise dans les compositions pharmaceutiques selon la présente invention et nécessaire pour une thérapie efficace dépendra de différents facteurs tels que le mode d'administration, la partie du corps ciblée, l'état physiologique et l'age du patient, des éventuels effets secondaires, de contre-indications s'il en existe, de thérapies concomittantes ou d'autres variables qu'un homme de l'art saura ajuster. Le dosage pour de telles préventions ou traitements thérapeutiques devra être réalisé de manière à optimiser sa sécurité et son efficacité. En général, les dosages utilisés in vitro peuvent fournir une indication pour les quantités utilisées pour l'administration d'anticorps in situ et ainsi des modèles animaux peuvent être utilisés pour déterminer les quantités efficaces d'immunoglobulines selon l'invention pour le traitement de pathologie particulière, notamment du SIDA. Les anticorps monoclonaux ou leurs fragments selon l'invention constituent également un moyen d'analyse immunocytochimique ou immunohistochimique de l'expression de la protéine d'intérêt sur des gels d'électrophorèse ou des membranes de tranferts, ou des coupes de tissus spécifiques, par exemple par immunofluorescence, par marquage enzymatique, radioactif ou à l'or. Ils permettent notamment de mettre en évidence et de quantifier la présence spécifique normale ou anormale de la protéine d'intérêt dans les tissus ou prélèvements biologiques, ce qui les rend utiles pour l'identification et la localisation de l'expression de la protéine d'intérêt, pour le diagnostic de pathologies liées à la présence anormale de la protéine d'intérêt, tel par exemple la gp 160, mais également pour le suivi de l'évolution de méthodes de prévention ou de traitement de pathologie nécessitant ladite détection ou ledit dosage. Plus généralement, les anticorps, leurs fragment ou l'antisérum selon l'invention peuvent être avantageusement mis en oeuvre dans toute situation où l'expression d'une protéine d'intérêt, la protéine gpl60 contenant l'épitope R7V par exemple, doit être observée de manière qualitative et/ou quantitative. D'autres caractéristiques et avantages de l'invention apparaissent dans la suite de la description avec les exemples et les figures dont les légendes sont représentées ci-après. FIGURES FIGURES 1 la : Comparaison d'une IgG3 d'un sérum normal (SNI) avec celle d'un patient HIV positif non-progresseur (ARG). lb : Confirmation du poids moléculaire plus faible de la chaîne lourde avec un autre patients (ETC). le : Autres patients (THO, GEM) Id : Autre patient (VAL) et autre séronégatif (SN2). le : Autre patient (BOI) FIGURE 2. Protocole d'immuno-précipitation du rétrovirus VIH par l'IgG3 variant à titre d'exemple. FIGURE 3. Immuno-précipitation du virus par les IgG3 de trois patients différents. FIGURE 4. Immuno-précipitation de quantités variables de virus avec une quantité fixe d'anticorps IgG3. FIGURE 5. Immuno-précipitation de souches différentes et éloignées entre elles par une quantité fixe d'IgG3. FIGURE 6. Schéma résumant le protocole de neutralisation des virus. EXEMPLES EXEMPLE 1 : Mise en évidence de variantes d'IgG3 chez certains sujets infectés par le VIH qualifiés de non progresseurs. Les immunoglobulines anticorps se divisent en quatre sous-classes et généralement les anticorps induits après immunisation appartiennent aux IgG\, qui ont une demi-vie très longue. Les inventeurs décrivent ici chez des patients infectés par le VIH, la présence d'anticorps protecteurs associés aux IgG3, alors que les anticorps signant l'infection sont toujours des IgG,. Une variante d'IgG3 existe chez certains sujets infectés par le VIH qualifiés de non progresseurs. 1. 1. La variante IgG3 a une durée de vie de plusieurs mois Cette variante diffère des IgG3 classiques par sa demi-vie ; elle est de sept jours pour les IgG3 classiques et de plusieurs mois pour la variante, comme le montre l'étude sur les suivis séquentiels de patients, les sérums étant prélevés à plusieurs mois d'intervalle (tableau 1). Sur le tableau 1, on voit les résultats d'un test ELISA pour la recherche des anticorps protecteurs dirigés contre un épitope associé au HIV, appelé R7V. Ces anticorps sont révélés par des anticorps seconds distinguant les différentes sous-classes des immunoglobulines humaines. Les anticorps protecteurs anti-R7V sont toujours des IgG3 ou/et IgG4, mais jamais des IgG] ou IgGz, et leur titre élevé se maintient plusieurs mois. Tableau 1 : Etude des sous-classes d'IgG anti-R7V de sérums séquentiels Seuil de positivité = 0, 1 Seuil de positivité = 0, 1 Sérum patient 1 dilué au 1/51 Sérum patient 2 dilué au 1/51 Dates prélèvement IgG, +2 IgG3 IgG4 Dates prélèvement IgGj+z IgG3 IgG4 Blanc 0,075 0,117 0,127 Blanc 0,075 0,117 0,127 Témoin Témoin séronégatif-0, 005 0, 031-0, 012 séronégatif-0, 005 0, 031-0, 012 02/12/1993-0, 004 0, 002-0, 011 01/07/1993-0, 004 0. 565-0, 068 05/04/1994-0, 002 0, 216 0,025 11/10/1993-0, 003 0,381 -0, 066 28/07/1994 0 0, 456 0,028 17/01/1994-0, 002 0, 418-0, 065 10/11/1994-0, 004 0,070 0,029 02/05/1994-0, 006 0. 442-0, 068 09/03/1995 0,0015 0. 262 0,042 01/08/1994-0, 008 0. 419-0, 069 13/07/1995-0, 004 0. 130 0,035 05/12/1994-0, 003 0. 455-0, 062 22/02/1996-0, 009 0,224 0,032 10/04/1995-0, 005 0, 440-0, 065 20/06/1996-0, 007 0, 128 0,025 03/07/1995-0, 007 0, 397-0, 068 28/11/1996-0, 006 0. 166 0,050 30/10/1995-0, 004 0. 726-0, 072 03/03/1997-0, 003 0. 110-0, 065 29/01/1996 0 0, 641-0, 065 05/06/1997-0, 005 0, 085-0, 069 06/05/1996-0, 006 0, 544-0, 068 15/12/1997-0, 007 0, 073-0, 069 19/09/1996-0, 007 0, 491 -0, 067 11/05/1998-0, 008 0, 090-0, 069 20/01/1997-0, 009 0. 374-0, 064 25/09/1998-0, 002 0. 153-0, 063 06/10/1997-0, 002 0394 -0, 064 11/10/1999-0, 004 0, 148-0, 067 12/01/1998-0, 005 0, 558-0, 066 11/01/2001-0, 006 0, 33 -0, 069 19/03/1998-0, 007 0, 532-0, 068 22/06/1998-0, 007 0, 503 -0, 074 28/09/1998-0, 004 0, 457-0, 062 01/02/1999-0, 006 0, 230-0, 067 26/04/1999-0, 01 0, 086-0, 064 15/07/1999-0, 013 0, 060-0, 066 16/12/1999 0,099 0, 079-0, 061 23/03/2000 0,084 0, 058-0, 064 1. 2. La a variante IgG3 a une chaîne lourde l'environ 50 kDa Les analyses électrophorétiques des figures 1 montrent que la variante de l'IgG3 présente chez les patients non-progresseurs infectés par le VIH a une chaîne lourde à mobilité électrophorétique plus grande, ce qui signifie que son poids moléculaire est plus faible que celui d'une IgG3 classique purifiée chez un sujet normal HIV négatif. Les figures la à le montrent la migration des IgG3 purifiées soit à partir de sujets normaux HIV négatifs, soit à partir de patients HIV positifs sur un gel de polyacrylamide 12%. Les chaînes lourdes ont un poids moléculaire aux alentours de 50 kda, alors que les chaînes légères ont un poids moléculaire de 25 kda. (Marqueurs de poids moléculaire : MI : 250 ; 150 ; 100 ; 75 ; 50 ; 37 ; 25 ; 15 ; 10 kda/Mz : 200 ; 116 ; 97 ; 66 ; 45 ; 31 ; 21,5 ; 14,4 ; 6,5 kda) La variante de l'IgG3 est reconnue par des anticorps dirigés soit contre la partie Fab des IgG3 soit des anticorps dirigés contre la partie charnière. La variation devrait donc porter sur le fragment Fc, probablement au niveau de la glycosylation. 1. 3. La variante de l'IgG3 est retrouvée chez la majorité des HIV séropositifs non- progresseurs (tableau 2). Tableau 2 : Détermination de la sous-classe des 12 : G anti-R7V par ELISA Seuil de positivité = 0, 2. IgG, IgG2 IgG3 IgG4 Blanc 0,058 0, 056 0,085 0,081 Témoin séronégatif 1/50 0,059 0,060 0,113 0,091 Témoin positif 0,057 0,057 0,854 0,084 1 ALB HE 1/50 (07/01/94) 0,072 0,063 0,080 0,073 2 ANO MA 1/50 (13/11/00) 0,061 0,057 0,136 0,108 3 ARG CH 1/50 (30/11/00) 0,058 0,055 0. 481 0,071 4 AUC LA 1/50 (15/11/99) 0,065 0,061 0,112 0,138 5 AUR PH 1/50 (03/01/94) 0,069 0,064 0,343 0, 685 6 BEN MIl/50 (14/02/00) 0,062 0,064 0,077 0,071 7 BER YV 1/50 (13/03/00) 0,105 0,073 0,109 0, 307 BER YV 1/50 (25/11/99) 0,102 0,072 0,107 0,339 8 BITT MA 1/50 (27/05/99) 0,060 0,054 0,384 0,091 9 BOICH 1/50 (27/11/00) 0,060 0,055 0, 236 0,092 10 BOU NA 1/50 (23/12/99) 0,070 0,067 0,119 0,081 11 CAM GE 1/50 (27/11/00) 0,063 0,072 0,079 0,077 12 COU DI 1/50 (16/09/98) 0,094 0,073 0,081 2,468 COU DI 1/50 (09/03/00) 0,074 0,070 0,077 1. 935 COU DI 1/50 (08/09/00) 0,058 0,059 0,059 2. 641 13 CUC JE 1/50 (28/09/00) 0,059 0,056 0,173 0,088 14 DAN NO 1/50 (28109/00) 0,073 0,066 0,083 0,094 15 DAR DO 1/50 (10/03/94) 0,078 0,066 0, 795 0,085 16 DOM JO 1/50 (13/07/92) 0,060 0,057 0. 275 0,096 17 ESM GU 1/50 (18/12/00) 0,061 0,064 0,083 0,119 18 ETC MA 1/50 (25/09/98) 0,114 0,067 1. 266 0,089 ETC MA 1/50 (13/06/00) 0,057 0,057 0, 854 0,084 19 FER JE 1/50 (26/06/00) 0,064 0,070 0,079 0204 20 FIN RO 1/50 (13/11/00) 0,063 0,065 0,097 0,089 21 FONRE 1/50 (29/06/00) 0,083 0,053 0,095 0,070 22 GEM SA 1/50 (20/10/98) 0,093 0,071 0,090 0,086 GEM SA 1/50 (29/04/99) 0,060 0,061 0,114 0,080 GEM SA 1/50 (07/06/00) 0,078 0,050 0,079 0,068 23 GOU JE 1/50 (13/06/00) 0,069 0,052 0,098 0,072 24 KAZ AL 1/50 (20/01/01) 0,059 0,065 0,117 0,080 25 KOH MI 1/50 (05/08/94) 0,056 0,056 0. 869 0,088 26 MAN GU 1/50 (06/04/00) 0,074 0,053 0,072 0,079 27 MART DO 1/50 (03/05/00) 0,082 0,064 0,311 0,077 MART DO 1/50 (09/05/94) 0,082 0, 067 0, 329 0,079 28 MART PA 1/50 (13/06/00) 0,055 0,058 0,106 0,083 IgGi IgG2 IgG3 IgG4 Blanc 0,058 0,056 0,085 0,081 Témoin séronégatif 1/50 0,059 0,060 0,113 0,091 Témoin positif 0, 057 0,057 0, 854 0,084 29 MEC EV 1/50 (28/01/00) 0,068 0,054 0,086 0,074 30 MEN CH 1/50 (09/03/00) 0,051 0,053 0,078 0,155 31 MOR AN 1/50 (20/04/00) 0,075 0,065 0,109 0,086 32 PAT MA 1/50 (09/07/98) 0,086 0,072 0,116 0,085 PAT MA 1/50 (07/07/00) 0,054 0,053 0,104 0,070 PAT MA 1/50 (11/06/91) 0,082 0,067 0,152 0,067 33 REF EL 1/50 (28/09/00) 0,070 0,067 0,085 1, 153 34 RIG ST 1/50 (02/02/98) 0,089 0,070 0,131 0,096 35 RIO EM 1/50 (11/06/92) 0,071 0,067 0,115 0,073 36 ROB IS 1/50 (26/06/00) 0,054 0,056 0,095 0,068 37 ROD CH 1/50 (12/04/99) 0,057 0,055 0,155 0,068 38 SAN FR 1/50 (19/06/00) 0,059 0,054 0,139 0,088 39 SAU CH 1/50 (20/12/91) 0,074 0,069 0,092 0. 640 SAU CH 1/50 (27/11/00) 0,059 0,054 0,142 0, 307 40 SEN BE 1/50 (22/02/91) 0,058 0,057 0,143 0,082 41 SIL RE 1/50 (25/08/00) 0,056 0,057 0,131 0,107 42 SIMOFR 1/50 (29/06/00) 0,061 0,055 0. 221 0,077 43 SLI ZB 1/50 (13/11/00) 0,065 0,055 0. 260 0,095 44 SOL EM 1/50 (27/11/00) 0,056 0,059 0,180 0,143 45 TAR AL 1/50 (24/07/91) 0,059 0,058 0, 203 0, 414 46 TEM ST 1/50 (10/05/93) 0,059 0,055 0. 219 0. 338 TEM ST 1/50 (18/11/99) 0,056 0,060 0,104 0,103 47 TER YV 1/50 (02/06/99) 0,061 0,057 0,123 0,101 TER YV 1/50 (28/10/99) 0,104 0,076 0,122 0,412 48 THI SY 1/50 (05/06/00) 0,056 0,062 0,096 0,089 49 THO EL 1/50 (04/12/00) 0,077 0,066 0,115 1. 189 50 THO MI 1/50 (08/06/00) 0,057 0,057 0,146 0,078 51 THO PA 1/50 (04/12/00) 0,075 0,073 0,088 0,080 52 TOC RO 1/50 (23/11/92) 0,058 0,056 0,095 0,097 53 TOC UR 1/50 (23/11/92) 0,064 0,057 0,106 0,136 54 VAL MAR 1/50 (12/02/92) 0,060 0,058 0,098 0,084 55 VIA JE 1/50 (01/07/93) 0,098 0,077 1, 426 0,099 VIA JE 1/50 (23/03/00) 0,059 0,053 0,181 0,073 Ainsi, il apparaît à la lecture de ce tableau qu'aucun des sérums testés n'a d'anticorps antiR7V de type IgG1 ou IgG2. Sur 28 patients différents et R7V positifs, 13 patients sont IgG3 positif (46,4%), 3 patients sont IgG3 positif et IgG4 positif (10,7%) et 12 patients sont IgG4 positifs (42,8%). Chez un même patient, on retrouve toujours la même sous-classe d'IgG anti-R7V quelque soit la date de prélèvement, lorsque la réponse est positive (BER YV, COU DI, ETC MA, MART DO, SAU CH). La sous-classe d'anticorps dirigés contre la glycoprotéine d'enveloppe du virus (gp 160) a été déterminée par un tests ELISA (tableau 3). Tableau 3 : Détermination de la sous-classe en IIZG anti-sp 160 (Kit Sanofi Diagnostics Pasteur) Seuil de positivité = 0, 09 IgG1 IgG2 IgG3 IgG4 Blanc 0,065 0,062 0,060 0,067 Témoin séronégatif 1/5 0,058 0,059 0,066 0,069 ARG CH 1/5 (30/11/00) 0. 355 0, 061 0. 328 0,076 AURPH 1/5 (03/01/94) 1, 645 0,068 0. 160 0,781 BER YV 1/5 (25/11/99) 1. 322 0,073 0, 371 0,078 CAM GE 1/5 (27/11/00) 0. 121 0,050 0,066 0,051 COU DI 1/5 (16/09/98) 1,659 0,064 0, 479 0,162 DAN NO 1/5 (28/09/00) 0. 855 0,058 0,361 0,069 DAR DO 115 (3 1/08/98) 1, 102 0,064 0. 107 0. 101 ESM GU 1/5 (18/12/00) 0, 435 0,065 0,084 O. tH ETCMA 1/5 (13/06/00) 0, 513 0, 060 0, 135 0, 172 FIN RO 1/5 (13/11/00) 0, 735 0,063 1. 538 0,082 GEM SA 1/5 (07/06/00) 0, 540 0,058 0,104 0,081 MEN CH 1/5 (09/03/00) 1. 260 0,054 0, 209 0,069 PATMA 1/5 (09/07/98) 0, 828 0,061 0. 168 0. 125 REF EL 1/5 (28/09/00) 1, 511 0,073 0,252 0,080 ROB IS 1/5 (26/06/00) 0, 182 0,049 0,076 0,052 ROD CH 1/5 (12/04/99) 0,952 0,059 0, 154 0,071 SAN FR 1/5 (19/06/00) 1. 112 0,063 0, 157 0,076 SAU CH 1/5 (27/11/00) 0. 122 0,06 0, 062 1. 297 SOLEM 1/5 (27/11/00) 0,191 0,056 0, 106 0,062 TEM ST 1/5 (18/11/99) 0. 834 0,061 0,069 0,082 TER YV 1/5 (28/10/99) 1, 389 0,061 0. 252 0. 23] THI SY 1/5 (05/06/00) 0, 633 0,063 0,088 0,088 THO EL 1/5 (04/12/00) 0. 899 0,057 0, 158 0,064 THO MI 1/5 (08/06/00) 0, 151 0,053 0,082 0,059 THO PA 1/5 (04/12/00) 0. 435 0, 066 0,071 0,097 TOC RO 1/5 (25/11/99) 1. 042 0,06 0. 173 2. 387 VIA JE 1/5 (01/07/93) 1, 748 0, 080 3. 062 0, 127 A la lecture de ce tableau, il apparaît qu'aucun des sérums testés n'a d'anticorps antigpl60 de type IgG2. Sur 27 patients différents, 27 patients sont IgG, positif (100%), 6 patients sont IgG1 positif uniquement (22, 2%), 10 patients sont IgG1 positif et IgG3 positif (40,7%), 2 patients sont IgG1 positif et IgG4 positif (7,4%), et 9 patients sont IgG, positif, IgG3 positif et IgG4 (29,6%). Cette expérience confirme la dispersion de la réponse en anticorps dirigés contre la glycoprotéine d'enveloppe gpl60 du virion, et la constance des IgG3 ou IgG4 chez les personnes protégées. EXEMPLE 2 : Immunoprécipitation du VIH par les IgG3 totales, purifiées à partir des patients HIV séropositifs et non-progresseurs. 2.1. Protocole expérimental : À une quantité donnée d'IgG3, on ajoute une quantité voulue de virus HIV pur, et le mélange est laissé à incuber 1 heure à +4 C. On ajoute alors : soit 50-100 nul de protéine G fixé sur des billes magnétiques et on incube 1 heure à +4 C (la protéine G fixe les anticorps IgG ;, IgGz IgGs et IgG4) soit 50-100 ut de protéine A fixé sur des billes magnétiques et on incube 1 heure à +4 C (la protéine A fixe les anticorps IgGi, IgGz et IgG4 mais pas les IgG3). Les billes se fixe à la paroi du tube la plus proche du champ magnétique que l'on applique et le complexe billes de protéine G-IgG3-virus peut alors être isolé. Le virus lié aux anticorps est ensuite mis en évidence par la mesure de la protéine virale P24 libérée après lyse du virus du virus immunoprécipité (kit COULTER (6604535) et/ou par la technique de RT-PCR pour déceler l'ARN viral. (voir figure N 2). 2.2. Résultats Une expérience type est montrée sur le tableau 4 où 65% du virus est précipité par zig d'IgG3 d'un patient HIV positif non-progresseur, alors que les IgG3 d'un séronégatif sont sans effet. Tableau 4 : Immunoprécipitation (virus NDK/PBL du 29/02/96) Echantillon % Précipitation 20 g IgG3 ARG CH + 50 l virus par + 100 l protéine G 64,70% 10 g IgG3 ARG CH + 50 l virus par + 50 l protéine G 56,40% 20 g IgG3 Séroneg + 50 l virus par + 100 l protéine G 0,40% 10 g IgG3 Séroneg + 50 l virus par + 50 l protéine G 0,20% Témoin virus : 50 l virus par + 50 l protéine G 0,10% 20 g IgG3 ARG CH + 50 l virus par + 100 l protéine A 0,70% 10 g IgG3 ARG CH + 50 l virus par + 50 l protéine A 0,70% 20 g IgG3 Séroneg + 50 l virus par + 100 l protéine G 0,20% 20 g IgG3 Séroneg + 50 l virus par + 100 l protéine G 0,40% Témoin virus : 50 l virus par + 50 l protéine G 0,40% La figure 3 montre l'immunoprécipitation du virus par les IgG3 de trois patients différents. Cette immunoprécipitation du virus pour une quantité fixe de virus est dosedépendante. La figure 4 montre qu'avec une quantité fixe d'IgG3, on peut piéger diverses dilutions de virus. La figure 5 nous indique que quelque soit le type de VIH, il est immunoprécipite par les IgG3, ici de trois patients. Les souches virales utilisées sont des isolats primaires avec comme phénotype les clades de A à F ou une souche ni 0 ni M la YBF 30. Ces expériences confirment que l'on peut isoler un virus par immunoprécipitation à partir des IgG3 purifiés par la protéine G. EXEMPLE 3 : Neutralisation du VIH par les IgG3 totales, purifiées à partir des patients HIV séropositifs et non-progresseurs. 3. 1. Protocole expérimental : 50 ul de solution d'IgG3 + 50 Ill de virus dilué (dans du milieu RPMI 10 %) sont mis à incuber 1 heure à 37 C dans une plaque de 96 puits. Puis 0, 3 106 cellules par puits sont ajoutées au mélange et placées 1 heure à 37 C. Après 2 lavages par du milieu RPMI 0%, les cellules sont mises en plaque de 24 puits dans du milieu RPMI 10% en présence d'IgG3 (figure 6). 3.2. Résultats (cf. tableau 5) Tableau 5 : Neutralisation de NDK/PBL (29/02/96) par les IgG# ou IgG1,2,4 d'ARG CH, d'ETC MA, (TAUR PH, et de THO MI. Dose ( g/ml) Jour 3 Jour 4 Jour 5 Jour 6 - (+) ++ ++T 40 g/ml - (+) ++ ++T - - (+) + 20 g/ml - - + ++T IgG3 ARG CH (+) + ++ ++T 10 g/ml (+) + ++ ++T (+) - (+) - 5 g/ml (+) (+) ++ ++T - (+) + ++T 40 g/ml - (+) ++ ++T (+) + ++ ++T 20 g/ml - (+) ++ ++T IgG1,2,4 ARG CH + ++ ++ ++T 10 g/ml - (+) + ++T (+) + ++ ++T 5 g/ml (+) + ++ ++T (+) + ++ ++T 100 g/ml - (+) ++ ++T (+) + ++ ++T 50 g/ml IgG3 ETC MA - (+) ++ ++T (13/09/01) (+) ++ + ++T 25 g/ml (+) + ++ ++T - - ++ ++T 12,5 g/ml (+) (+) ++ ++T (+) ++ ++ ++T 100 g/ml (+) + ++ ++T (+) ++ ++ ++T 50 g/ml IgG1,2,4 ETC MA (+) + + ++T (13/09/01) (+) (+) ++ ++T 25 g/ml - - ++ ++T (+) ++ ++T ++T 12,5 g/ml - (+) ++ ++T - - - - 1/50 Sérum témoin positif de - - - neutralisation - - - - 1/100 - - - Cellules MT4 TEMOIN - - - - - - - VIRUS NDK/PBL (+) + ++ ++T 10-4 (29/02/96) (+) + ++ ++T - : absence de syncitia + : présence de syncitia Les IgG3 isolés de deux patients neutralisent le VIH comme il est montré dans le tableau 5. À 40 Ilg et 20 u. g d'IgGs, on constate une neutralisation du virus, c'est à dire une absence de syncitia, alors que les IgGJ, 2, 4 sont limités à la dose de 40 Jlg/ml. EXEMPLE 4 : Virolyse du VIH par le complément et les IgG3 totales, purifiées à partir des patients HIV séropositifs et non-progresseurs. 4.1. Protocole expérimental : 10 ou 20 g d'IgG3 + 12,5 ul de virus pur sont mis à incuber l heure à 4 C sous agitation rotative. Puis 1 ml de complément de lapin au 1/12 (dilution du complément dans du milieu RPMI 10% chauffé à 37 C) est ajouté au mélange, et mis à incuber 30 min à 37 C. Les échantillons sont dilués et la P24 est dosée (kit COULTER 6604535). 4.2. Résultats : (tableau 6) Tableau 6 : Essai de lyse par le complément (virus NDK/PBL du 29/02/96) Echantillon % Lyse 20 ag IgG3 ARG CH + 12, 5 ici virus + 1 ml complément au 1/12 57, 60% 10 ag IgG3 ARG CH + 12, 5 ici virus + 1 ml complément au 1/12 60, 30% 12, 51l1 virus + 1 ml de RPMI 10%, pas de triton 18, 60% 12, 5 ul virus + 1 ml complément au 1/12 1, 70% 12, 5 ul virus + 1 ml de RPMI 10% + triton 100% Le complément se fixe sur le complexe IgGs-virus et lyse le virus, comme il est montré sur le tableau 6 où 60 % du virus est lysé en présence de 10 g d'IgG3. La neutralisation des virus, et la virolyse en présence de complément font des IgG3 un potentiel important pour leur emploi comme anticorps thérapeutiques dans l'infection à VIH ou dans toute autre infection virale où les IgG3 seront présentes soit de façon classique, soit sous la forme de la variante. Cette étude suggère que le complément en adjonction avec les anticorps anti-R7V dans le sang des personnes infectées par le VIH, peuvent lyser le virus et détruire son infectivité. La présence de virus infectieux dans le plasma est de 10 à 100 fois supérieur chez les progresseurs que chez les non-progresseurs. En effet, les patients progresseurs n'ayant pas d'anticorps anti-R7V donc pas d'IgG3 anti-R7V, il n'y aura pas de neutralisation ni de virolyse, et donc présence de virus. En conclusion, les inventeurs ont démontré que les anticorps à visée thérapeutique de nature IgG3 fixant le complément et assurant une virolyse seront très efficaces, non seulement en précipitant et en neutralisant le virus mais encore en le détruisant. REFERENCES BIBLIOGRAPHIQUES Coligan et al., Current Protocols in Immunology [mise à jour annuellement (4volumes) édités par le"National Institutes of Health"par-Wiley Interscience. Harlow, et al., (1988) Antibodies : A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Publications pp. 726. Köhler et Milstein. (1975) Nature, 256 : 495-497. Sambrook, J., Frischt, E. F. and Maniatis, T. Molecular cloning. A laboratory manual. Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, N. Y., 1989. REVENDICATIONS 1. Immunoglobuline humaine de classe IgG3 purifiée et/ou isolée, ou l'un de ses fragments, ayant les caractéristiques suivantes : une durée de vie dans le sérum du patient d'au moins un mois ; une chaîne lourde dont le poids moléculaire, déterminé par mobilité électrophorétique, est inférieur au poids moléculaire des IgG3 normalement présentes dans le sérum humain (60kDa), la dite chaîne lourde ayant un poids moléculaire d'environ 50 kDa et comprenant le site de fixation du complément. 2. Immunoglobuline selon la revendication 1 caractérisée en ce que la concentration de la dite immunoglobuline dans le sérum est supérieure à la concentration d'IgG3 d'un sérum normal d'au moins trois fois (soit 1 g/1). 3. Immunoglobuline selon les revendications 1 à 2 isolée et/ou purifiée à partir d'un patient affecté d'une pathologie choisie parmi les infections par les virus, les maladies infectieuses à évolution variable telles les maladies neurologiques, les maladies cutanées, les maladies auto-immunes, les cancers d'origine rétroviral. 4. Immunoglobuline selon la revendication 3, caractérisée en ce que le dit virus est sélectionné parmi le virus de l'immunodéficience humaine (HIV), les virus de la leucémie des cellules T humaines (HTLV), le cytomégalovirus (CMV), les virus de l'herpès (HSV-1, HSV-2), le virus d'Epstein-Barr (EBV), les virus de l'hépatite (HBV, HCV). 5. Immunoglobuline selon la revendication 4 caractérisée en ce que le dit virus est le HIV et le dit individu est un patient séropositif non-progresseur. 6. Immunoglobuline selon la revendication 5 liant sélectivement l'épitope R7V de la protéine gpl60 du virus HIV-1, le dit épitope comprenant la séquence Arg-Thr-Pro- Lys-Ile-Gln-Val. 7. Immunoglobuline selon les revendications 1 à 6 ou un de ses fragments, caractérisée en ce que la dite immunoglobuline ou un de ses fragments est marquée directement ou indirectement par un marqueur sélectionné parmi les isotopes radioactifs, les enzymes, les colorants, les haptènes, les agents luminescents tels que les agents radioluminescents, chémiluminescents, bioluminescents, fluorescents, phosphorescents, les ligands tels que la biotine, l'avidine, la streptavidine, la digoxygénine. 8. Immunoglobuline selon la revendication 7 caractérisée en ce que elle est couplée à un support solide directement ou indirectement par l'intermédiaire d'un bras d'espacement. 9. Antisérum comprenant l'immunoglobuline selon les revendications 1 à 6. 10. Procédé de diagnostic et/ou de dosage in vitro d'une pathologie sélectionnée parmi les infections virales et les maladies infectieuses à évolution variable, comprenant les étapes de : - (i) Mise en contact d'un échantillon de fluide corporel et/ou de tissu corporel provenant d'un patient chez lequel on suspecte la présence de la dite pathologie avec une immunoglobuline selon l'une quelconque des revendications 1 à 8, ou l'un de ses fragments, ou un antisérum selon la revendication 9 ; et - (ii) Détection de la présence d'un complexe immun entre la dite immunoglobuline et un épitope spécifique de la dite pathologie. 11. Procédé de diagnostic et/ou de dosage in vitro du syndrome d'immunodéficience humaine (SIDA) comprenant les étapes de : - (i) Mise en contact d'un échantillon de fluide corporel et/ou de tissu corporel provenant d'un patient chez lequel on suspecte la présence du HIV avec une immunoglobuline selon l'une quelconque des revendications 4 à 6, ou l'un de ses fragments, ou avec un antisérum selon la revendication 9 ; - (ii) Détection de la présence d'un complexe immun entre la dite immunoglobuline et l'épitope R7V de la protéine gp 160 du HIV contenu dans le dit échantillon. 12. Procédé in vitro de traitement de fluide biologique d'un patient affecté d'une pathologie sélectionnée parmi les infections virales et les maladies infectieuses à évolution variable, le dit procédé comprenant l'étape de mettre en contact une quantité efficace d'immunoglobuline selon les revendications 1 à 8, ou l'un de ses fragments, ou d'un antiserum selon la revendication 9, avec le dit fluide biologique, de sorte à neutraliser un épitope spécifique de la pathologie dans le dit fluide. 13. Procédé in vitro de neutralisation de cellules infectées par le HIV dans une échantillon biologique de fluide corporel et/ou de tissu corporel provenant d'un patient séropositif caractérisée en ce qu'il comprend les étapes suivantes : a) Combiner de manière simultanée, séparée ou étalée dans le temps : - l'immunoglobuline selon les revendications 5 à 6, ou l'un de ses fragments, ou un antisérum selon la revendication 9, - l'échantillon biologique contenant les cellules infectées par le HIV présentant la protéine gp 160 à leur surface, et - la protéine G attachée à des particules magnétiques ; b) Incuber le mélange obtenu en a) dans des conditions permettant la fixation de la dite immunoglobuline sur la protéine gpl60, et de préférence sur l'épitope R7V, pour former un complexe, le dit complexe comprenant le dit anticorps lié à une cellule infectée par le HIV fixé sur cette particule magnétique ; c) Déplacer cette particule magnétique vers un endroit prédéterminé du récipient contenant ce mélange réactionnel, tel que le déplacement est accompli par un champ magnétique agissant sur la dite particule magnétique. 14. Procédé in vitro de diagnostic de patient non-progresseur affecté d'une pathologie sélectionnée parmi les infections virales et les maladies infectieuses à évolution variable caractérisé en ce que l'on détecte la présence d'immunoglobuline IgG3 ayant les caractéristiques suivantes : une durée de vie dans le sérum du patient d'au moins un mois ; une chaîne lourde dont le poids moléculaire, déterminé par mobilité électrophorétique, est inférieur au poids moléculaire des IgG3 normalement présentes dans le sérum humain (60kDa), la dite chaîne lourde ayant un poids moléculaire d'environ 50 kDa et comprenant le site de fixation du complément. 15. Procédé selon les revendications 12 et 14 caractérisé en ce que la dite infection virale est le SIDA. 16. Procédé selon les revendications 14 et 15 caractérisé en ce que la détection est réalisée au moyen d'un test immunologique choisi parmi un test ELISA, RIA, une méthode sandwich, une immuno-précipitation, un test d'agglutination. 17. Utilisation d'une immunoglobuline selon les revendications 1 à 8, ou l'un de ses fragments, ou d'un antisérum selon la revendication 9 pour la réalisation d'un test immunologique choisi parmi le test ELISA, le test RIA, la méthode sandwich, l'immuno-précipitation, le test d'agglutination. 18. Immunoglobuline selon la revendication 1 à 7 à titre de médicament. 19. Utilisation d'une immunoglobuline selon la revendication 18 à titre de médicament comme anticorps thérapeutique. 20. Utilisation d'une immunoglobuline selon la revendication 18 à titre de médicament comme agent de ciblage. 21. Utilisation d'une immunoglobuline selon les revendications 1 à 7, ou l'un de ses fragments, ou d'un antisérum selon la revendication 9 pour la préparation d'un médicament destiné au traitement thérapeutique et/ou prophylactique d'une maladie virale ou infectieuse à évolution variable. 22. Utilisation d'une immunoglobuline selon les revendications 1 à 7, ou l'un de ses fragments, ou d'un antisérum selon la revendication 9 pour la préparation d'un médicament destiné au traitement thérapeutique et/ou prophylactique du SIDA. 23. Utilisation selon la revendication 22 d'une immunoglobuline selon les revendications 5 ou 6 pour la préparation d'un médicament destiné à neutraliser chez un homme affecté du SIDA la protéine gp 160 de HIV. 24. Vaccin ou composition pharmaceutique pour le traitement ou la prévention d'une pathologie sélectionnée parmi les infections virales et les maladies infectieuses à évolution variable comprenant une immunoglobuline selon les revendications 1 à 7, ou l'un de ses fragments ou un antisérum selon la revendication 9 en association avec un transporteur, un diluant ou un excipient pharmaceutiquement acceptable. 25. Utilisation d'une immunoglobuline selon les revendications 1 à 7 comme marqueur de protection dans les pathologies sélectionnées parmi les maladies virales et les maladies infectieuses à évolution variable.