Brevet FR2839555A1 — publié le 20031114

L'invention concerne la détection in vitro d'une infection par un microorganisme infectieux, notamment viral, et en particulier la détection in vitro d'une infection par un virus de l'hépatite C (VHC). L'invention concerne plus précisément aussi un procédé de détection simultanée d'un antigène d'un microorganisme infectieux, notamment viral, et d'anticorps dirigés contre ce même microorganisme infectieux ainsi que les réactifs et trousses le mettant en oeuvre. Plus particulièrement, elle concerne un procédé de détection simultanée d'antigène VHC et d'anticorps anti-VHC, et les réactifs et trousses le mettant en #uvre. L'infection par le virus de l'hépatite C, une hépatite initialement appelée hépatite Non-A, Non-B, est un problème de santé préoccupant et reconnu depuis longtemps, en particulier en transfusion sanguine. La demande de brevet EP 318 216 publiée le 31 Mai 1989 décrit le clonage de fragments de l'ADNc d'un virus responsable de l'hépatite C chez l'homme, dénommé HCV (en anglais) ou VHC (en français). Elle décrit aussi la séquence de cinq gènes codant les protéines non-structurales (NS1 à NS5) du virus (environ 78 % du génome total du VHC), l'antigène C100-3 (qui contient 363 acides aminés de la région NS3-NS4 et fusionné à la superoxyde dismutase) ainsi qu'un procédé de détection d'anticorps anti VHC à l'aide de l'antigène C100-3. Ce procédé de détection d'anticorps anti VHC, dit de première génération, a permis, entre autres, d'établir que le VHC est une cause majeure d'hépatite Non-A, Non-B, maintenant appelée hépatite C, dans le monde. Cependant, ce procédé ne permet pas de détecter plus de 70 à 80 % des sérums infectés par le virus. Ce manque de sensibilité ne permet pas non plus une détection précoce des infections. Okamoto et al. (1990a) et la demande de brevet EP 388 232 publiée le 19 septembre 1990 décrivent la séquence terminale 5' du génome du virus VHC, c'est à dire la séquence des gènes codant les protéines structurales (capside, matrice, enveloppe) du virus responsable de l'hépatite C. Okamoto et al. (1990b) publient l'utilisation de la séquence d'acides aminés 39-74 de la capside de l'HCV comme cible de détection ELISA d'anticorps anti-VHC. L'article Hosein et al. (1991), décrit un immunoessai de détection d'anticorps anti-VHC fondé sur l'emploi d'antigènes peptidiques synthétiques structuraux (capside : dans la région AA 1-120) et non-structuraux (NS3-NS4 : dans la région AA 1200-1800). Il démontre l'intérêt des peptides synthétiques en détection d'anticorps anti VHC et de la combinaison des antigènes structuraux et non-structuraux: elle augmente la sensibilité, et donc la précocité, de la détection. L'essai décrit ici permet une détection d'anticorps plus précoce de 4 à 10 semaines. L'article montre aussi qu'il n'existe pas d'épitope immunodominant majeur, comme on en connaît, par exemple, chez les virus du SIDA. Nasoff et al. (1991) constatent que la plupart des épitopes immunoréactifs dominants de la capside sont localisés dans la région Nterminale (AA 1- 40) et que les anticorps dirigés contre ces épitopes apparaissent précocement après l'infection. Les essais de détection d'anticorps anti-VHC dits de deuxième génération (c'est à dire fondés sur l'utilisation simultanée d'antigènes de capture non-structuraux et structuraux) constituent un progrès significatif vis à vis des essais de première génération. Cependant, ils manquent encore de sensibilité : ils détectent en effet au mieux 95 à 98 % des sérums prélevés chez des patients contaminés par le VHC. Par voie de conséquence, cette détection est encore trop peu précoce et laisse encore passer inaperçus des dons de sang infecté en transfusion sanguine. En effet, pour réduire les risques posttransfusionnels, il est nécessaire de détecter la présence du virus lui-même, avant l'apparition d'anticorps, et le plus tôt possible après la contamination. Cette période entre la contamination et la séroconversion (c'est à dire l'apparition d'anticorps) est appelée fenêtre sérologique . Différentes équipes (Garson et al. (1990) ; Shieh et al. (1991)) ont proposé la détection de l'ARN viral par la PCR (Réaction en chaîne par la polymerase) pour résoudre le problème de sensibilité et de précocité évoqué ci-dessus. Cette méthode permet en effet une détection extrêmement sensible et précoce de l'infection par le VHC, c'est à dire seulement quelques jours après l'exposition au virus, soit 4 à 8 semaines avant l'élévation des anticorps antiviraux circulants. Elle constitue actuellement la méthode de référence pour la détection du virus dans les fluides biologiques. Toutefois, la méthode PCR appliquée au VHC se heurte à diverses difficultés. D'une part, elle implique la réalisation de pré-étapes de d'extraction, purification de l'ARN, puis de transcription inverse de l'ARN en ADNc, et une partie du matériel viral est perdue au cours de ces étapes préalables. D'autre part, elle requiert un équipement d'amplification spécifique et onéreux. De plus, elle ne permet pas de traiter simultanément un grand nombre d'échantillons et donne souvent lieu à des contaminations. Une autre approche, en vue de la détection précoce de l'infection par le VHC, a consisté en la détection de l'antigène viral (capside) circulant. Cet antigène apparaît également plusieurs semaines avant l'apparition des anticorps anti-VHC sériques. Takahashi et al., (1992) décrivent une technique ELISA détectant l'antigène de capside à l'aide d'un couple d'anticorps. Cependant, la détection de cet antigène est difficile à mettre au point en raison, en grande partie, du faible taux d'antigène détectable dans le sang et de la qualité des réactifs immunologiques disponibles. Hajime Tokita et al. (2000) décrivent un immunoessai de type sandwich à l'aide d'un couple d'anticorps monoclonaux (5F11et 5E3), connu sur le marché sous le nom Immucheck F HCV Ag Core Kokusai , de détection très sensible. Les auteurs de cet article soulignent qu'une mutation Thr49Pro dans la protéine de capside réduit la sensibilité de l'essai. Cherchant également à détecter l'antigène de capside à un stade précoce, Peterson et al. (2000) expose une technique de détection ELISA de l'antigène de capside du VHC à l'aide d'anticorps monoclonaux anti-capside, sans prétraitement de l'échantillon. L'article montre, grâce à la comparaison de trois essais indépendants (détection de l'ARN du VHC par la PCR, des anticorps anti VHC et de l'antigène de capside par ELISA), qu'ainsi l'antigène de capside circulant du VHC peut être détecté utilement dans des poches de sang prélevé durant la phase séronégative précoce de l'infection (soit environ 1 jour après la détection de l'ARN). La précocité de la détection de l'infection par le virus de l'hépatite C associée à la possibilité de détecter les réponses anticorps postérieures à la séroconversion sur toute la durée de l'infection reste un objectif d'actualité, tout particulièrement en transfusion. Dans l'optique de disposer d'une méthode simple, sensible, spécifique, reproductible, bon marché et de mise en #uvre facile, automatisable - en vue du dépistage de masse - pour détecter, en premier lieu, l'antigène VHC pendant la période de la fenêtre sérologique, puis suivre l'évolution sérologique du patient après la séroconversion, combiner une détection des anticorps anti-VHC et une détection d'un antigène de VHC est tout à fait souhaitable. Cependant, ceci pose un problème majeur, celui de l'interférence, sur le dosage de l'antigène de VHC, entre les anticorps anti-VHC présents dans le sérum et des anticorps anti-VHC marqués. Ainsi l'introduction sur une phase solide, en vue de la détection d'un anticorps donné, d'un antigène cible qui aurait les mêmes épitopes que ceux reconnus par le(s) anticorps marqué (s), utilisé(s) en vue de la détection simultanée en sandwich d'un antigène, entraînerait irrémédiablement une fixation d'anticorps marqué (s) surla phase solide et donc une réponse faussement positive de l'essai. Ceci est particulièrement vrai dans un système de détection simultanée, sur la même phase solide, d'anticorps anti capside du VHC et d'antigène de capside du VHC. Ainsi le dépôt sur la phase solide, en vue de la détection d'anticorps anti capside du VHC, d'un antigène de capside qui a les mêmes épitopes que ceux reconnus par le(s) anticorps anti capside VHC marqué (s) utilisé(s) en vue de la détection de l'antigène capsidique entraîne une fixation d'anticorps marqué (s) surla phase solide et résulte en une réponse faussement positive de l'essai. Pour contourner ce risque d'interférence, Chiron Corp. a réalisé des essais détectant l'antigène de capside et les seuls anticorps NS3/NS4 de patients. Pour cela Chiron a mis en oeuvre d'une part un antigène NS3/4a fixé sur une phase solide, pour capturer les anticorps anti VHC de l'échantillon testé, et d'autre part des anticorps monoclonaux (c11-3 et c11-7) anti-capside du VHC, également fixés. Les anticorps capturés étaient détectés par un antigène fusionné avec de la SOD (superoxyde dismutase) en présence d'un anticorps monoclonal marqué à la peroxydase, tandis que l'antigène capturé était détecté par un autre anticorps monoclonal marqué également à la peroxydase (VII European Congress of the International Society of Blood Transfusion - Paris, 15-18 juillet 2001). Face au problème des interférences, la demande EP 1 020 727 propose une méthode de mesure simultanée de l'antigène de capside VHC et des anticorps anti-capside VHC, dans laquelle l'antigène est capturé et marqué par des anticorps dirigés contre des épitopes capsidiques différents des épitopes capsidiques servant simultanément à la capture et la révélation ou détection d'anticorps anti-capside. Un exemple représentatif est donné où, dans l'essai simultané de détection de l'antigène en sandwich et des anticorps en essai indirect, on utilise, pour détecter l'antigène, un premier anticorps (de capture), dirigé contre les épitopes de la séquence de l'acide aminé (AA) 100 à l'acide aminé 130 de la capside du VHC, et un deuxième anticorps (de détection), dirigé contre les épitopes de la séquence AA40-50, et, pour détecter les anticorps. L'antigène de capture utilisé contient pour sa part les séquences AA1-42etAA60-80. Cette méthode n'est cependant pas exempte d'inconvénients, en particulier parce qu'elle nécessite l'utilisation d'anticorps dirigés contre des épitopes relativement distants les uns des autres, et qui sont en fait des épitopes mineurs, peu immunogènes. Les auteurs de la présente invention se sont alors attachés à mettre au point une méthode alternative pour résoudre le problème posé. Il a été maintenant trouvé une méthode de détection simultanée d'un antigène de VHC et des anticorps d'un patient dirigés contre cet antigène qui évite ce problème d'interférence et qui atteint des niveaux de sensibilité et de précocité de détection qui se rapprochent de ceux de la PCR, tout en permettant de suivre l'évolution sérologique du patient après la séroconversion. Les auteurs de l'invention résolvent ce problème en rendant artificiellement différents, par modification de structure, certains épitopes des antigènes cibles utilisés pour capturer les anticorps. Les épitopes ainsi modifiés sont alors détruits. Simultanément, les anticorps utilisés pour la capture et/ou la détection des antigènes sont eux choisis de telle sorte qu'ils reconnaissent précisément des épitopes non modifiés présents sur les antigènes du patient, et qu'ils ne puissent ainsi pas se lier aux antigènes modifiés, qui ne présentent plus ces mêmes épitopes. Puisque les épitopes ne sont plus identiques, il n'existe donc plus de compétition entre les anticorps utilisés pour capturer et/ou détecter l'antigène de VHC et les anticorps du patient. De plus, grâce à cet artifice, il est possible d'utiliser simultanément pour la détection des anticorps et des antigènes les séquences les plus immunoréactives et d'augmenter ainsi la sensibilité de la détection. Il va de soit que l'invention n'est pas limitée à la détection de la seule infection due au virus de l'hépatite C (VHC). Elle englobe aussi la généralisation du procédé, des réactifs et des trousses décrits ci-après, à la détection de l'infection, et/ou du suivi de l'infection, due à toutes sortes de microorganismes infectieux (comme des virus, tels que, par exemple, les virus responsables des diverses hépatites A, B, C, D ou E, les rétrovirus, en particulier les rétrovirus responsables du SIDA chez l'homme (VIH-1, VIH-1 groupe 0, VIH-2) ou le singe, le cytomégalovirus (CMV), les flavivirus, dont les virus de la dengue, ainsi que les bactéries, les parasites microbiens, etc. ) pour lesquels une détection simultanée d'antigènes et d'anticorps est souhaitable. L'invention, plus particulièrement décrite ici pour le virus de l'hépatite C (VHC), est d'une portée très générale que l'homme du métier appréhendera aisément. Définitions Le terme virus de l'hépatite C ou VHC couvre ici toutes les souches, tous les types, sous-types et génotypes du virus responsable de l'hépatite C. Le procédé de l'invention vise en effet à détecter toute infection par le VHC, quels que soient son origine et son génotype. Ceci comprend en particulier les types et sous-types bien connus du virus circulant en Europe, aux Etats-Unis, au Japon, etc.. (c'est à dire les 6 génotypes majeurs : 1,2, 3, 4, 5, 6 et leurs sous-types 1a, 1b, 3a,...). Voir Stuyver et al. (1994) ; Bukh (1995)). Dans le contexte de l'invention, un échantillon biologique est de préférence constitué par un fluide biologique, tel que du sang, plasma, sérum, de l'urine, du liquide céphalorachidien, de la salive, etc... Le terme ,anticorps se réfère à tout anticorps entier ou fragment fonctionnel d'un anticorps comprenant ou consistant en au moins un site de combinaison antigénique, permettant audit anticorps de se lier à au moins un déterminant antigénique d'un composé antigénique. A titre d'exemple de fragments d'anticorps on peut citer les fragments Fab, Fab', F(ab')2 ainsi que les chaînes scFv (Single chain variable fragment), dsFv (Double-stranded variable fragment), etc... Ces fragments fonctionnels peuvent notamment être obtenus par génie génétique. La production d'anticorps monoclonaux ou de sérums polyclonaux monospécifiques utiles dans le cadre de l'invention relève de techniques conventionnelles, qui sont détaillées plus loin. Par anticorps de capture , on entend un anticorps ou une partie d'anticorps, de préférence fixé sur une phase solide, qui est capable de retenir un antigène du microorganisme, par exemple du VHC présent dans un échantillon biologique, par liaison affine. La présence des anticorps et antigènes dans l'échantillon biologique est révélée par des moyens de détection . S'agissant de la détection de l'antigène, l'invention prévoit notamment une détection à l'aide d'au moins un anticorps de détection . Un tel anticorps de détection, marqué, est capable de se lier à l'antigène capturé, par liaison affine, en reconnaissant un site épitopique, différent de celui reconnu par l'anticorps de capture, ou identique du fait de la présence de motif répétitif au niveau de la capside. S'agissant de la détection des anticorps, on peut utiliser notamment des anticorps anti immunoglobuline, ou anti-isotype, marqués, par exemple des anti-Immunoglobulines G. Le terme marqué se réfère aussi bien à un marquage direct (par le biais d'enzymes, radioisotopes, fluorochromes, composés luminescents, etc) qu'à un marquage indirect (par exemple, par le biais d'anticorps euxmêmes marqués de manière directe ou à l'aide de réactifs d'une paire d'affinité marquée, telle que, mais non exclusivement, la paire avidine marquée-biotine, etc.). Par fragment antigénique , on entend tout ou partie d'une protéine naturelle ou recombinée d'un microorganisme infectieux tel que le virus de l'hépatite C capable d'induire la synthèse d'anticorps chez un patient infecté ou chez un animal immunisé. Il peut notamment s'agir de tout ou partie de la protéine de capside, ou des protéines non-structurales du VHC, en particulier NS3 et NS4, qu'elles soient obtenues par génie génétique ou non. Par antigène de capture , on entend un fragment antigénique isolé, de préférence fixé sur une phase solide, qui est capable d'être reconnu par des anticorps dirigés contre le microorganisme, tels que des anticorps antiVHC et de permettre une liaison affine avec ces derniers. Par antigène de détection , on entend un antigène marqué et modifié comme l'antigène de capture (Le. il contient au moins un site épitopique ou épitope détruit). Il permet soit de détecter par compétition l'antigène capturé, soit de détecter des anticorps par méthode sandwich antigène-anticorps-antigène classique, encore appelée méthode sandwich double antigène (Maiolini et al. (1978)). Conformément à la présente invention, l'antigène de capture, et/ou l'antigène de détection éventuellement utilisé, en particulier, en détection d'anticorps par sandwich antigène-anticorps-antigène, contient au moins un site épitopique ou épitope détruit. Un site épitopique ou épitope est une séquence d'acides aminés qui est reconnue par un anticorps et permet la liaison spécifique de celui-ci. En ce qui concerne les protéines du VHC, plusieurs épitopes de la protéine de capside ont été identifiés. On connaît notamment les épitopes localisés entre l'acide aminé 16 et l'acide aminé 40, et entre l'acide aminé 44 et l'acide aminé 47. On peut se référer aussi, par exemple, aux articles ou divulgations Okamoto et al. (1990) ; Nasoff et al. (1991) ; Leahy et al. (1991) ; Takahashi et al. (1992) ; Sällberg et al. (1992) ; et Ishida, (1993). De nombreux épitopes de protéines non structurales du VHC sont connus aussi de l'homme du métier. Sur la protéine NS3, on connaît les épitopes localisés entre l'acide aminé 1188 et l'acide aminé 1493 (Yang et al. (1995)), entre l'acide aminé 1175 et l'acide aminé 1334 (Yang et al. (1999)), et un épitope faible entre l'acide aminé 1460 et l'acide aminé 1532 (Clayes et al. (1995)). L'un des épitopes NS4 les plus connus, l'épitope 5-1-1 (AA 1689- 1706), est cité dans Cerino et al. (1991). Par site épitopique ou épitope détruit , on entend que celui-ci est modifié dans sa structure (primaire, secondaire, tertiaire et/ou quaternaire) de manière à ce que l'antigène de capture, ou de détection, qui comprend cet épitope détruit ne puisse pas se lier à l'anticorps de capture, et/ou à l'anticorps de détection, dirigé contre l'antigène détecté simultanément, tout en conservant la capacité de lier les anticorps dirigés contre le microorganisme tels que les anticorps anti-VHC, éventuellement présents dans l'échantillon biologique, par reconnaissance d'autres sites épitopiques restés intacts. Par voie de conséquence, les anticorps de capture et/ou de détection sont choisis de manière à reconnaître spécifiquement l'épitope en question sous sa forme intacte , c'est-à-dire non détruite ou native , sur l'antigène présent dans l'échantillon biologique. Dans le cadre de la présente invention, cet épitope sous sa forme intacte est également appelée épitope "homologue" de l'épitope détruit. Le terme spécifiquement , quand il se réfère à une reconnaissance ou une liaison spécifique d'un anticorps pour un antigène, signifie que l'anticorps interagit avec l'antigène sans interaction substantielle avec d'autres antigènes, ou si l'on parle de reconnaissance spécifique avec un épitope, par reconnaissance quasi-exclusive de cet épitope. Des constantes d'association supérieures à 108 L.mol-1 sont préférables. Anticorps de capture et de détection Les anticorps utilisés dans la présente invention sont des anticorps spécifiques de l'antigène, et, pour cette raison, sont des anticorps monoclonaux ou des anticorps polyclonaux monospécifiques, c'est à dire qu'ils ne reconnaissent spécifiquement qu'un épitope. Les anticorps monoclonaux peuvent être obtenus selon la méthode classique de fusion lymphocytaire et culture d'hybridomes décrite par Kôhler et Milstein, (1975). D'autres méthodes de préparation d'anticorps monoclonaux sont également connues (Harlow et al. (1988)). Les anticorps monoclonaux peuvent être préparés en immunisant un mammifère (par exemple une souris, un rat, un lapin, voire un être humain, etc...) et en utilisant la technique de fusion lymphocytaire conduisant à des hybridomes (Kôhler et Milstein, 1975). Des techniques alternatives à cette technique usuelle existent. On peut, par exemple, produire des anticorps monoclonaux par expression d'un acide nucléique cloné à partir d'un hybridome. On peut également produire des anticorps par la technique d'expression sur phage ( phage display ), en introduisant des ADNc d'anticorps dans des vecteurs, qui sont typiquement des phages filamenteux (par exemple, fUSE5 pour E.coli, Scott et al. (1990)). Ces derniers constituent des banques et présentent des fragments scFv à leur surface. Des protocoles de construction de ces banques d'anticorps sont décrits dans Marks et al. (1991). Les anticorps polyclonaux peuvent être obtenus à partir du sérum d'un animal immunisé contre un antigène de nature peptidique selon les modes opératoires usuels. D'une manière générale, on peut utiliser, par exemple, comme immunogène, un polypeptide, en particulier recombiné, ou un oligopeptide. Selon un protocole classique, des lapins sont immunisés avec l'équivalent de 1mg de l'immunogène peptidique selon la procédure décrite par Benoit et al. (1982). A intervalles de quatre semaines, les animaux sont traités par des injections de 200 g d'antigène et saignés 10 à 14 jours plus tard. Après la troisième injection, on évalue la capacité de l'anti-sérum à se lier au peptide antigène radiomarqué à l'iode, préparé par la méthode chloramine-T. On le purifie ensuite par chromatographie sur colonne échangeuse d'ions constituée de carboxyméthyl cellulose (CMC). Les molécules d'anticorps recueillies par élution sont ensuite ajustées à la concentration souhaitée par des méthodes bien connues de l'homme du métier, par exemple, en utilisant du DEAE Sephadex pour obtenir la fraction IgG. Afin d'augmenter la spécificité du sérum polyclonal, les anticorps peuvent être purifiés par une chromatographie d'immuno-affinité (ou d'immunoadsorption) en utilisant des peptides (tels que les peptides de capside AA 16-44 et AA 39-74 du VHC, à titre d'exemple non limitatif) ayant servi à l'immunisation et immobilisés en phase solide. L'antisérum est mis en contact avec un tel peptide immobilisé en phase solide pendant une durée suffisante de façon à faire immuno-réagir le peptide avec la molécule d'anticorps afin de former un complexe immunologique en phase solide. Les inventeurs ont ainsi plus particulièrement utilisé les anticorps spécifiques indiqués dans le Tableau 1 ci-après. Tableau 1 Anticorps Classe Epitope naturel Monoclonal reconnu Acm 1 IgG2a 44LGVR47 Acm 2 IgG2a 30IVGGVYL36 Acm 3 IgG1 29QIVGGV34 Acm 4 IgG1 29QIVGGV34 Acm 5 IgG1 30IVGGVYL36 Acm 6 IgG1 30IVGVYL36 Antigènes de capture et/ou de détection L'antigène de capture, et/ou l'antigène de détection, utilisé dans l'invention contient au moins un site épitopique détruit. La destruction d'au moins deux sites sur l'antigène peut être nécessaire, lorsque deux anticorps différents, qui risquent tous deux d'interagir avec l'antigène de capture et/ou l'antigène de détection, sont utilisés. C'est le cas, par exemple, pour les immunoessais de type sandwich, qui mettent en #uvre un anticorps de capture immobilisé sur la même surface que l'antigène de capture, et un anticorps de détection. L'anticorps de capture est alors choisi de manière à ce qu'il reconnaisse spécifiquement un épitope, sur l'antigène naturel du patient, homologue de l'un des deux épitopes détruits sur l'antigène de capture, tandis que l'anticorps de détection est choisi de manière à ce qu'il reconnaisse spécifiquement un épitope, sur l'antigène naturel du patient, homologue de l'autre des deux épitopes détruits sur l'antigène de capture. L'antigène de capture et/ou l'antigène de détection, peut comprendre, ou consister en un peptide mimant tout ou partie d'un épitope issu d'une protéine antigénique du VHC. De préférence, il s'agit d'un peptide de la protéine de capside, la détection des anticorps anti-capsides étant particulièrement avantageuse, notamment dans le cas d'hépatites chroniques, où on observe très peu d'antigènes, et davantage des anticorps anti-capside circulants. Il peut également s'agir de peptide (s) protéine non-structurale, telle que la NS3 et/ou la NS4. Divers antigènes de capture, ou de détection, peuvent être également combinés ensemble. Ce mode de réalisation, qui met en #uvre plusieurs antigènes de capture, et/ou de détection, différents, permet, par exemple, la détection simultanée d'anticorps anti-capside et d'anticorps anti-protéines non structurales NS3 et/ou NS4 du VHC. Une détection simultanée des anticorps anti-capside et des anticorps anti-NS3 est particulièrement préférée. L'invention comprend également une détection simultanée d'antigène capsidique, d'anticorps anti-capside, d'anticorps antiprotéines structurales d'enveloppe E1 et/ou E2, d'antigène d'enveloppe E1 et/ou E2, et/ou d'anticorps anti-protéines non structurales NS3 et/ou NS4 du VHC. D'autres combinaisons envisageables font aussi partie de l'invention. Pareillement, la détection simultanée d'antigène gag, d'anticorps anti gag, et/ou d'anticorps anti enveloppe de virus du SIDA (VIH-1, VIH-2, etc..) dont les séquences ont été publiées dans les articles Wain-Hobson et al. (1985) ; Ratner et al. (1985) ; Sanchez-Pescador et al. (1985) ; Guyader et al. (1987) fait aussi partie de l'invention. Similairement, la détection d'antigène NS1, décrite par Alcon et al., (2002) simultanément à celle d'anticorps anti NS1, voire aussi d'anticorps anti NS2, NS3, et/ou S4 des virus de la dengue fait aussi partie de l'invention. Les techniques d'application sont bien connues de l'homme du métier. De manière préférentielle, car plus pratique, les antigènes de capture, et/ou de détection, sont des peptides synthétiques produits par les techniques standards bien connues de l'homme du métier. On peut citer comme exemple la synthèse de type Merrifield qui est avantageuse pour des raisons de pureté, de spécificité antigénique, d'absence de produits secondaires non désirés et pour sa facilité de mise en oeuvre (Merrifield, (1963), ; R. C.Sheppard (1971) ; Atherton et al. (1989)). Comme synthétiseur automatique, on peut utiliser le synthétiseur "9050 Plus Pep Synthesizer" de Millipore, le synthétiseur "Pioneer" de Perseptive, le synthétiseur "433A" de ABI (Applied Biosystems Inc.) ou le synthétiseur Symphony de Rainin. Les peptides peuvent également être obtenus par synthèse en phase homogène. La destruction des épitopes sur ces antigènes de capture, et/ou de détection, peut être réalisée de diverses manières. La seule condition requise à cette modification des sites épitopiques est que l'antigène de capture, et/ou de détection, ne puisse pas se lier à l'anticorps de capture, et/ou à l'anticorps de détection, tout en conservant substantiellement la capacité de lier les anticorps anti-VHC éventuellement présents dans l'échantillon biologique. Une modification d'au moins un acide aminé, de préférence deux acides aminés, dans chaque site épitopique visé, peut suffire à détruire l'épitope, sans toutefois déstabiliser les autres épitopes non modifiés. Une telle modification peut être notamment obtenue par une substitution d'acide aminé, par exemple en substituant un résidu non-glycine par un résidu glycine ou alanine, ou en substituant un acide aminé d'une classe par un acide aminé d'une autre classe. On peut, par exemple, substituer un acide aminé à chaîne latérale polaire (tel que l'asparagine, la glutamine, la sérine, la thréonine et la tyrosine), par un acide aminé à chaîne latérale non polaire (tel que la glycine, l'alanine, la valine, la leucine, l'isoleucine, la phénylalanine, la méthionine, le tryptophane et la cystéine), et vice versa. On peut également substituer un acide aminé à chaîne latérale basique (tel que la lysine, l'arginine et l'histidine), par un acide aminé à chaîne latérale acide (tel que l'acide aspartique et l'acide glutamique), et vice versa, ou encore substituer un acide aminé dont la chaîne latérale porte un cycle (par exemple la tyrosine, la phénylalanine), par un acide aminé à chaîne latérale linéaire, et vice versa. Une délétion d'un ou plusieurs acides aminés, ou une insertion d'un ou plusieurs acides aminés, en particulier d'acides aminés non naturels, dans l'épitope, permet également de détruire l'épitope. Des modifications des groupes fonctionnels des acides aminés, à savoir notamment les groupes OH, NH2, ou SH, sont également possibles. Parmi les peptides utiles dans le cadre de la présente invention, on peut concevoir des peptides dérivés de toutes sortes de microorganismes infectieux (comme les virus, tels que, par exemple, les virus responsables des diverses hépatites, les rétrovirus, en particulier les rétrovirus responsables du SIDA (VIH-1, VIH-2,..), le virus CMV, les virus de la dengue, ainsi que les bactéries, les parasites microbiens, etc..) pour lesquels une détection simultanée d'antigènes et d'anticorps est souhaitable. En particulier, et à titre d'illustration et non exclusif, on peut citer notamment les peptides de capside du VHC, plus particulièrement ceux allant des acides aminés 1 à 75,6 à 68 et 1 à 53. Ces séquences, qui correspondent à des séquences consensus du génotype 1 (sous-types 1a, 1 b, 1 c) sont présentées dans la liste de séquences annexée et désignées respectivement SEQ ID n 1, n 2 et n 3 : SEQ ID n 1 : MSTNPKPQRKTKRNTNRRPQDVKFPGGGQIV3iGGV34YL36LPRRGPRL44GV R47ATRKTSERSQPRGRRQPIPKARRPEGRS75 SEQ ID n 2 : 6KPQRKTKRNTN RRPQDVKFPGGGQIV 31GGV 34 YL36LPRRGPRL44GVR47A TR KTSERSQPRGRRQPIPKA68 SEQ ID n 3 : MSTNPKPQRKTKRNTNRRPQDVKFPGGGQIV3iGGV34YL36LPRRGPRL44GV R47ATRKTS53 Font également partie de l'invention des peptides ou polypeptides modifiés, utiles comme antigènes de capture, et/ou de détection. Il s'agit en particulier de fragments peptidiques de capside, portant au moins un site épitopique modifié. Un objet de l'invention est donc un peptide ou polypeptide issu de la protéine de capside du VHC, portant au moins un site épitopique intact et au moins un site épitopique détruit, ledit site épitopique détruit étant ainsi rendu incapable d'être reconnu par un anticorps anti-capside. Des peptides préférés présentent une substitution de deux, trois ou quatre acides aminés, notamment dans la partie constituée par les acides aminés 20 à 40 et dans la partie constituée par les acides aminés 44 à 47. Les mutations suivantes sont particulièrement intéressantes et préférées : - substitution des acides aminés 34,44, et 47 par des résidus glycine (séquence SEQ ID n 4, peptide désigné Cap 1-75 (G34-G44G47) ) : SEQ ID N 4 : Cap 1-75 (G34-G44-G47) MSTNPKPQRKTKRNTNRRPQDVKFPGGGQIV3iGGG34YL36LPRRGPRG44G VG47ATRKTSERSQPRGRRQPIPKARRPEGRS75 - substitution des acides aminés 31,44, et 47 par des résidus glycine (séquence SEQ ID n 5, peptide désigné Cap 1-75 (G31-G44G47) ) ; SEQ ID N 5 : Cap 1-75 (G31-G44-G47) iMSTNPKPQRKTKRNTNRRPQDVKFPGGGQIG3iGGV34YL36LPRRGPRG44G VG47ATRKTSERSQPRGRRQPIPKARRPEGRS75 - substitution des acides aminés 36,44, et 47 par des résidus glycine (séquence SEQ ID n 6, peptide désigné Cap 1-75 (G36-G44G47) ) ; SEQ ID N 6 : Cap 1-75 (G36-G44-G47) MSTNPKPQRKTKRNTNRRPQDVKFPGGGQIV3iGGV34YG36LPRRGPRG44G VG47ATRKTSERSQPRGRRQPIPKARRPEGRS75 - substitution des acides aminés 34,44, et 47 par des résidus glycine (séquence SEQ ID n 7, peptide désigné Cap 6-68 (G34-G44- G47) ) ; SEQ ID N 7 : Cap 6-68 (G34-G44-G47) 6KPQRKTKRNTNRRPQDVKFPGGGQIV3iGGG34YL36LPRRGPRG44GVG47AT RKTSERSQPRGRRQPIPKA68 - substitution des acides aminés 31,44, et 47 par des résidus glycine (séquence SEQ ID n 8, peptide désigné Cap 6-68 (G31-G44- G47) ) ; SEQ ID N 8 : Cap 6-68 (G31-G44-G47) 6KPQRKTKRNTNRRPQDVKFPGGGQIG3iGGV34YL36LPRRGPRG44GVG47AT RKTSERSQPRGRRQPIPKA68 - substitution des acides aminés 36,44, et 47 par des résidus glycine (séquence SEQ ID n 9, peptide désigné Cap 6-68 (G36-G44- G47) ) ; SEQ ID N 9 : Cap 6-68 (G36-G44-G47) 6KPQRKTKRNTNRRPQDVKFPGGGQIV31GGV34YG36LPRRGPRG44GVG47AT RKTSERSQPRGRRQPI PKARRPEGRS75 - substitution des acides aminés 34,44, et 47 par des résidus glycine (séquence SEQ ID n 10, peptide désigné Cap 1-53 (G34-G44- G47) ) ; SEQ ID N 10 : Cap 1-53 (G34-G44-G47) iMSTNPKPQRKTKRNTNRRPQDVKFPGGGQIV3iGGG34YL36LPRRGPRG44G VG47ATRKTS53 - substitution des acides aminés 31,44, et 47 par des résidus glycine (séquence SEQ ID n 11, peptide désigné Cap 1-53 (G31-G44G47) ) ; SEQ ID N 11 : Cap 1-53 (G31-G44-G47) iMSTNPKPQRKTKRNTNRRPQDVKFPGGGQIG3,GGV34YL36LPRRGPRG44G VG47ATRKTS53 - substitution des acides aminés 36,44, et 47 par des résidus glycine (séquence SEQ ID n 12, peptide désigné Cap 1-53 (G36-G44- G47) ) ; SEQ ID N 12 : Cap 1-53 (G36-G44-G47) 1MSTNPKPQRKTKRNTNRRPQDVKFPGGGQIV31GGV34YG36LPRRGPRG44G VG47ATRKTS53 - délétion des acides aminés 45, et 46 : SEQ ID N 13 : Cap 1-75 (G34-del(45-46)) 1MSTNPKPQRKTKRNTNRRPQDVKFPGGGQIV31GGG34YL36LPRRGPRL44== R47ATRKTSERSQPRGRRQPIPKARRPEGRS75 - modification de longueur du squelette et inversion de charge : SEQ ID N 14 : Cap 1-75 (G34-ssA45-E47) 1MSTNPKPQRKTKRNTNRRPQDVKFPGGGQIV31GGG34YL36LPRRGPRL44 ssA45VE47ATRKTSERSQPRGRRQPIPKARRPEGRS75 où ssA représente la ss-Alanine - modification de longueur du squelette et insertion d'acide aminé: SEQ ID N 15 : Cap 1-75 (G34-G45-G45') iMSTNPKPQRKTKRNTNRRPQDVKFPGGGQIV3iGGG34YL36LPRRGPRL44G45 G45'VR47ATRKTSERSQPRGRRQPIPKARRPEGRS75 - inversion de polarité: SEQ ID N 16 : Cap 1-75 (nL29-G30-G44-G47) 1MSTNPKPQRKTKRNTNRRPQDVKFPGGGnL29G30V31GGV34YL36LPRRGPR G44GVG47ATRKTSERSQPRGRRQPIPKARRPEGRS75 où nL représente la norLeucine - substitution d'acides aminés SEQ ID N 17 : Cap 1-75 (G34-F35-G44-G47) 1MSTNPKPQRKTKRNTNRRPQDVKFPGGGQIV31GGG34F3536LPRRGPRG44 GVG47ATRKTSERSQPRGRRQPIPKARRPEGRS75 - substitution d'acides aminés SEQ ID N 18 : Cap 1-75 (G34-hS35-G44-G47) MSTNPKPQRKTKRNTNRRPQDVKFPGGGQIV3 GGG34hS35L36LPRRGPRG44 GVG47ATRKTSERSQPRGRRQPIPKARRPEGRS75 où hS représente l'homoSérine Lors de l'utilisation de ces séquences peptidiques, il peut être avantageux d'ajouter en position N-terminale les acides aminés C-G-G- (i.e. Cys-Gly-Gly-) afin de pouvoir plus facilement les accrocher à un support ou toute molécule d'intérêt. Le peptide C-G-G-Cap 1-75 (G34-G44-G47) est particulièrement avantageux à cet égard. Procédés de détection L'invention fournit de manière générale un procédé de détection in vitro d'une infection par un microorganisme dans un échantillon biologique, comprenant la détection simultanée d'un antigène dudit microorganisme et d'un anticorps dirigé contre ledit microorganisme, présents dans un échantillon biologique, procédé comprenant a) la mise en présence de l'échantillon biologique avec un anticorps de capture dirigé contre ledit microorganisme, et un antigène de capture dérivé dudit microorganisme; b) l'incubation du mélange dans des conditions permettant la formation de complexes antigènes-anticorps ; c) la révélation des complexes antigènes-anticorps formés, qui met éventuellement en #uvre au moins un anticorps de détection, marqué, capable de se lier à l'antigène dudit microorganisme capturé et/ou éventuellement aussi un antigène de détection, marqué, capable de se lier à l'anticorps dirigé contre ledit microorganisme capturé; et dans lequel l'antigène de capture dudit microorganisme est un fragment antigénique dudit microorganisme dont au moins un épitope est détruit ; et l'anticorps de capture et/ou de détection reconnaît ledit épitope, intact, de l'antigène capturé. Il est entendu que le procédé de l'invention n'est pas restreint à l'utilisation d'un seul couple anticorps/antigène. Il peut être réalisé en mettant en #uvre plusieurs anticorps de capture différents, et plusieurs antigènes de capture différents. En particulier, l'invention fournit donc un procédé de détection in vitro d'une infection par le virus de l'hépatite C (VHC) dans un échantillon biologique, comprenant la détection simultanée d'un antigène du VHC et d'un anticorps anti VHC, dirigé contre ledit antigène du VHC, présents dans un échantillon biologique, procédé comprenant a) la mise en présence de l'échantillon biologique avec un anticorps de capture anti-VHC et un antigène de capture du VHC ; b) l'incubation du mélange dans des conditions permettant la formation de complexes antigènes-anticorps ; c) la révélation des complexes antigènes-anticorps formés, qui met éventuellement en #uvre un anticorps de détection, marqué, capable de se lier à l'antigène du VHC capturé, et/ou éventuellement un antigène de détection, marqué, capable de se lier à l'anticorps anti VHC capturé ; et dans lequel l'antigène de capture du VHC est un fragment antigénique du VHC dont au moins un épitope est détruit; et l'anticorps de capture et/ou de détection reconnaît ledit épitope, intact, de l'antigène capturé. L'échantillon biologique peut être éventuellement traité dans une étape préalable, ou mis en présence de l'antigène de capture et de l'anticorps de capture dans des conditions favorisant l'exposition des antigènes à détecter. Avantageusement, on traite l'échantillon par un agent dénaturant, avant la détection, et de préférence, avant sa mise en contact avec les anticorps utilisés. Dans le cas de la détection de la capside du VHC, cet agent dénaturant peut notamment être constitué d'un ou plusieurs détergents de type non-ionique ou encore d'une solution acide. Cet immunoessai combiné peut être réalisé selon divers formats bien connus de l'homme du métier : en phase solide ou en phase homogène ; en un temps ou en deux temps ; en méthode double sandwich (sandwich pour les deux détections d'antigènes et d'anticorps) ; en méthode indirecte (pour la détection d'anticorps) combinée à une méthode sandwich (pour la détection d'antigène), à titre d'exemples non limitatifs. Selon un mode de réalisation préféré, l'anticorps de capture et l'antigène de capture sont immobilisés sur une phase solide. On peut utiliser, à titre d'exemples non limitatifs de phase solide, des microplaques, en particulier des microplaques de polystyrène, telles que celles commercialisées par la société Nunc, Danemark. On peut également utiliser des particules ou des billes solides, des billes paramagnétiques, telles que celles fournies par Dynal ou Merck-Eurolab (France) (sous la marque EstaporTM), ou encore des tubes à essai en polystyrène ou polypropylène, etc... Un format d'immunoessai de type sandwich entre deux anticorps (de capture et de détection) est particulièrement avantageux pour la détection des antigènes présents dans l'échantillon biologique, tandis que les anticorps peuvent être révélés en mettant en oeuvre un antigène de capture et un conjugué marqué qui se fixe sur l'anticorps (selon un format communément désigné comme format indirect ), par exemple la protéine A marquée ou encore un anticorps anti immunoglobuline, ou anti-isotype, marqué. On peut encore détecter avantageusement les anticorps en mettant en oeuvre un antigène de capture et un antigène marqué qui se fixent sur l'anticorps (selon un format désigné comme sandwich antigène-anticorps-antigène ou sandwich double antigène ). Un format d'immunoessai de détection des antigènes par compétition est également possible. D'autres modalités d'immunoessai sont encore envisageables et bien connues de l'homme du métier. D'une manière générale, selon l'invention, l'anticorps de capture et l'anticorps de détection (notamment utilisé dans le cas du sandwich) sont choisis de sorte qu'ils reconnaissent l'antigène cible naturel à détecter, présent dans l'échantillon biologique, en un épitope, intact, homologue de l'épitope détruit sur l'antigène de capture et qu'ils ne reconnaissent pas l'épitope détruit sur l'antigène de capture. La détection simultanée d'antigène d'un microorganisme et d'anticorps dirigé contre ledit microorganisme, notamment la détection simultanée de l'antigène de VHC et des anticorps anti-VHC, selon l'invention, peut être réalisée en un seul temps, à savoir en mettant simultanément en présence l'échantillon biologique, les moyens de détection, tels que notamment le ou les anticorps de détection, en même temps que le ou les anticorps de capture et le ou les antigène (s) de capture. Dans ce cas, l'immunoessai de détection de l'antigène et l'immunoessai de détection des anticorps sont tous les deux réalisés de préférence en sandwich. De manière alternative, les moyens de détection, tels que notamment le ou les anticorps de détection, peuvent être ajoutés au mélange dans un deuxième temps, c'est à dire après que les premiers complexes antigènes-anticorps se sont formés. On parle alors d'essai en deux temps. Comme cela est décrit ci-dessus, l'antigène de capture peut être notamment un fragment antigénique de la protéine de capside du VHC, dans lequel au moins un site épitopique est détruit. L'antigène de capture peut être également constitué par un fragment antigénique d'une protéine non structurale du VHC, notamment mais non exclusivement de la NS3 ou de la NS4, dans lequel au moins un site épitopique est aussi détruit. Enfin, l'antigène de capture peut être également constitué par une combinaison d'un fragment antigénique de la protéine de capside, dans lequel au moins un site épitopique est détruit, et d'un fragment antigénique d'une protéine non structurale du VHC, NS3 ou NS4, dans lequel au moins un site épitopique est aussi détruit. Toute variante envisageable par l'homme du métier fait partie de l'invention. Selon un mode de réalisation préféré de l'invention, le procédé de détection d'une infection par le virus de l'hépatite C (VHC) dans un échantillon biologique comprend : a) la mise en présence de l'échantillon avec un anticorps de capture du VHC et un antigène de capture du VHC fixés sur une phase solide; b) l'incubation du mélange dans des conditions permettant la formation de complexes antigènes-anticorps ; c) la séparation de la phase solide et de la phase liquide ; d) la mise en contact de la phase solide avec un anticorps de détection, marqué, capable de lier l'antigène de VHC capturé, et un ou des anticorps anti-immunoglobuline, ou anti-isotype, marqué, capable de lier l'anticorps anti-VHC capturé, l'antigène de capture d'anticorps anti-VHC étant un fragment antigénique de la protéine de capside du VHC, dont deux épitopes ont été détruits, et les anticorps de capture et de détection reconnaissant chacun un desdits épitopes, intacts, de l'antigène de capside capturé. Dosages ELISA, radioimmunoessais, ou toute autre technique de détection peuvent être mises en #uvre pour révéler la présence des complexes antigènes-anticorps formés. Un même type ou plusieurs types de marqueurs peuvent être utilisés pour détecter, d'une part, l'antigène de microorganisme infectieux, notamment l'antigène VHC, et, d'autre part, l'anticorps dirigé contre le microorganisme infectieux, notamment l'anticorps anti-VHC. La détection de la présence d'antigènes ou d'anticorps dans l'échantillon biologique peut être complétée par une quantification, par exemple par mesure des signaux émis par les marqueurs (couleur, luminescence, radioactivité,...), selon les techniques standards bien connues de l'homme de métier. Trousses Les trousses et réactifs utiles pour la détection d'une infection par un microorganisme tel que le virus de l'hépatite C (VHC) dans un échantillon biologique, conformément au procédé de l'invention, peuvent être fournis pour une mise en pratique de l'invention facile et applicable à de nombreux échantillons biologiques. Un objet de l'invention est donc une trousse utile pour la détection d'une infection par un microorganisme dans un échantillon biologique, comprenant : - un antigène de capture ou de détection, qui est un fragment antigénique d'une protéine d'un microorganisme, ledit fragment comprenant au moins un épitope détruit, tout en conservant la capacité de lier les anticorps dirigés contre le microorganisme éventuellement présents dans l'échantillon biologique ; - un anticorps dirigé contre ledit épitope, intact, de ladite protéine du microorganisme. Un autre objet particulier de l'invention est une trousse pour la détection d'une infection par le virus de l'hépatite C (VHC) dans un échantillon biologique, comprenant : un antigène de capture ou de détection, qui est un fragment antigénique d'une protéine du VHC, ledit fragment comprenant au moins un épitope détruit, tout en conservant la capacité de lier les anticorps anti-VHC éventuellement présents dans un échantillon biologique ; un anticorps dirigé contre ledit épitope, intact, de ladite protéine du VHC, qui est de préférence un anticorps de capture dudit antigène de VHC présent dans l'échantillon biologique. De manière avantageuse, cette trousse peut contenir plusieurs antigènes et plusieurs anticorps de capture. Comme cela est décrit ci-dessus, l'anticorps de capture et l'antigène de capture peuvent être présentés de manière avantageuse sous une forme immobilisée sur une phase solide, telle qu'une microplaque. Une trousse préférée comprend a) l'antigène de capture, qui est un fragment antigénique d'une protéine du VHC, ledit fragment comprenant au moins deux épitopes détruits, tout en conservant la capacité de lier les anticorps anti-VHC éventuellement présents dans un échantillon biologique ; b) un anticorps de capture dirigé contre l'un desdits épitopes, intacts, de ladite protéine du VHC; ledit antigène de capture et ledit anticorps de capture étant immobilisés sur une phase solide ; Ci) un anticorps de détection, marqué, dirigé contre un autre desdits épitopes, intacts, de ladite protéine du VHC, C2) et/ou éventuellement un antigène de détection, marqué, qui est un fragment antigénique d'une protéine du VHC, ledit fragment comprenant au moins deux épitopes détruits, tout en conservant la capacité de lier les anticorps anti-VHC éventuellement présents dans un échantillon biologique . La trousse peut comprendre en outre un moyen de détection desdits anticorps présents dans l'échantillon biologique et complexés audit antigène de capture, par exemple un anticorps anti immunoglobuline, ou anti- isotype, marqué, ou encore un antigène de détection. L'antigène de détection est de préférence un fragment antigénique, par exemple d'une protéine du VHC, qui comprend au moins un épitope détruit, tout en conservant la capacité de lier les anticorps (anti-VHC) éventuellement présents dans l'échantillon. Comme cela est décrit ci-dessus, l'antigène de capture, comme l'antigène de détection, peut être notamment un fragment de la protéine de capside du VHC, fragment dont au moins un site épitopique est détruit, et l'anticorps de capture et/ou de détection est alors choisi pour reconnaître ledit site épitopique, intact, de la protéine de capside. Selon un mode de réalisation particulier, la trousse de l'invention comprend un anticorps qui reconnaît un épitope sélectionné dans le groupe d'épitopes de séquences suivantes : 44LGVR47 , 30IVGGVYL36 et 29QIVGGV34. En particulier, l'invention a également pour objet un ensemble de réactifs constitué d'un peptide de capside du VHC muté en au moins deux sites épitopiques distincts, tel que le peptide 1-75 (G34-G44-G47), et d'une paire d'anticorps ne pouvant pas reconnaître le peptide 1-75 (G34-G44-G47) alors qu'ils reconnaissent la séquence native de VHC correspondante. Les figures et exemples suivants illustrent l'invention sans en limiter la portée. LEGENDE DES FIGURES: La figure 1 est un schéma illustrant un procédé de détection du type de ceux mis en #uvre antérieurement à l'invention, avec, fixés sur une phase solide, un anticorps de capture et un antigène de capture non modifié. Ce schéma illustre la compétition de l'anticorps du patient avec l'anticorps de détection vis-à-vis de la liaison à l'antigène de capture. La figure 2, par comparaison, est un schéma illustrant un mode de réalisation de la présente invention. L'antigène de capture étant muté, il n'est plus capable d'être reconnu par l'anticorps de détection. Il n'y a donc plus interférence entre la détection de l'anticorps et la détection de l'antigène. EXEMPLES : Détection d'une infection par le virus de l'hépatite C Matériels pour les protocoles 1a et 1 b: 1 ) Phase solide choisie : microplaque Maxisorp, Nunc (Danemark). 2) Conjugué anticorps monoclonal anti-capside-peroxydase ( acm-POD ) : un conjugué de l'anticorps monoclonal anti-capside, Acm 2 (voir Tableau 1 ), marqué à la peroxydase est préparé selon le protocole décrit dans la demande de brevet EP 0 752 102. Un autre anticorps monoclonal anti-capside, Acm 1 (voir Tableau 1), est aussi utilisé. Matériels pour le protocole 1c: 1) Phase solide choisie: microplaque Maxisorp, Nunc (Danemark). 2) Conjugué anticorps monoclonal anti-capside-peroxydase ( acm-POD ) : un conjugué de l'anticorps monoclonal anti-capside, Acm 1 (voir Tableau 1 ), marqué à la peroxydase est préparé selon le protocole décrit dans la demande de brevet EP 0 752 102. Un autre anticorps monoclonal anti-capside, l'anticorps monoclonal anti-capside, Acm 3 (voir Tableau 1 ), est aussi utilisé. Matériels communs pour les protocoles 1a. 1 b et 1 c: 1) Conjugué anticorps polyclonal de souris anti-IgG (FCy) humaines-POD : ce conjugué est obtenu chez Jackson Immunoresearch Laboratories, USA. 2) Diluants des 1ère et 2ème étapes des protocoles selon l'invention : Diluant de la 1ère étape : Tampon Tris, NaCI 0. 05M, à pH 6,7 additionné d'IGEPAL CA 630 (Sigma) à 0,25%. Diluant de la 2ème étape : Tampon citrate (50 mM), à pH 6,7, glycérolé à 20%. 3) Solution de révélation: la solution de révélation était composée 3a) d'un tampon substrat : Solution d'acide citrique (0,075M), et d'acétate de sodium (0,1M), à pH 4,0 , contenant de l'H202 à 0,015% et du Diméthylsulfoxyde (DMSO) (PROLABO) à 4%, et 3b) d'un chromogène : Solution contenant de la tetraméthylbenzidine (TMB) (8 mM), (Sigma). Méthodes : Protocole 1 a : Protocole de détection simultanée de l'antigène capside et des anticorps (anti-capside et anti NS3, NS4) du virus de l'hépatite C dans un échantillon (sérum ou plasma) Le principe du test est basé sur une méthode immunoenzymatique de type sandwich pour la détection de l'antigène, et de type indirect, pour la détection des anticorps. Il repose sur les étapes suivantes : Une solution de sensibilisation est tout d'abord réalisée: # avec un mélange d'antigènes VHC : un peptide muté C-G- G-Cap 1-75 (G34-G44-G47) (capside) comprenant la séquence SEQ ID n 4 et deux protéines recombinées produites par Escherichia coli à partir de clones sélectionnés dans les régions non structurales NS3 (clone NS3.1 : AA 1192-1492), et NS4 (clone 5-1-1 : AA 1694-1735) et # avec un anticorps monoclonal anti-capside (Acm 1 ), en tampon Tris 0,5M, pH 7,4 additionné de TCEP (Tris(2carboxyéthyl)phosphine) (PIERCE) à 20 mM. Les cupules d'une plaque de microtitrage (Nunc, Maxisorp) sont alors sensibilisées avec la solution ci-dessus à raison de 110 l par cupule. Les plaques de microtitrage sont mises à incuber pendant une nuit à température ambiante (18-24 C). Après élimination de la solution de sensibilisation, les plaques sont lavées à l'aide d'un tampon phosphate (0,01 M, pH 7. 4) contenant 0,1 % de Tween 20, puis saturées par addition d'un tampon phosphate (0,01 M, pH 7) contenant 5% de saccharose, 25% de lait écrémé (Candia TM , France, ou tout autre lait écrémé équivalent du commerce) et 10mM d'EDTA. Dans chaque cupule, on distribue successivement 100 l de diluant de 1ère étape) contenant l'anticorps monoclonal anti-capside Acm 2 marqué à la peroxydase, puis 50 l d'échantillon (sérum ou plasma). Le milieu réactionnel est mis à incuber à 37 C pendant 1,5 heure. Les antigènes de capside du VHC éventuellement présents se fixent sur l'anticorps monoclonal de la phase solide Acm 1 et forment des complexes avec l'anticorps monoclonal anti-capside Acm 2 marqué à la peroxydase. De même, si des anticorps anti-VHC sont présents, ils se lient aux antigènes fixés sur la phase solide. Les plaques sont ensuite lavées (3 fois) à l'aide d'une solution de lavage (tampon Tris NaCI 0,01 M, pH 7,4 additionné de Tween 20 à 0,1%). Dans chaque cupule, on distribue 100 l de diluant de 2ème étape contenant les anticorps anti-IgG humaines marqués à la peroxydase. Le milieu réactionnel est mis à incuber à température ambiante (18-24 C) pendant 30 minutes. Les anticorps anti-lgG humaines marqués se fixent à leur tour aux anticorps spécifiques retenus sur la phase solide. Les plaques sont ensuite lavées (5 fois) à l'aide d'une solution de lavage (tampon Tris NaCI 0,01 M, pH 7,4 additionné de Tween 20 à 0,1%). Le conjugué anti-IgG humaines non lié est ainsi éliminé. Dans chaque cupule, on distribue 100 l d'une solution de révélation (tampon substrat + chromogène). On laisse la réaction se développer à l'obscurité pendant 30 minutes à température ambiante (18- 24 C). On distribue ensuite 100 l de solution d'arrêt (H2S04 1 N) dans chaque cupule. Après arrêt de la réaction, la lecture de la densité optique est effectuée au spectrophotomètre à 450/620 nm. Définition de la valeur-seuil : La valeur seuil a été déterminée après analyse statistique des données de spécificité et sensibilité en utilisant la courbe de ROC (Receiver Operating Characteristic) (Berck et Schultz, (1986)). L'étude de spécificité a porté sur 1000 échantillons de sujets sains et l'étude de sensibilité sur 200 échantillons positifs VHC (notamment des débuts de séroconversion) de panels commerciaux : BBI (Boston Biomedica Company, USA) , Impath (USA), Serologicals (USA), Nabi (USA), ProMedDx (USA)). La valeur seuil est calculée pour chaque plaque à partir du signal obtenu sur un témoin positif, divisé par un coefficient X, constant, spécifique du test. Elle est d'environ 0,280 unité de DO (Densité Optique) dans les exemples présentés. Protocole 1 b: Protocole de détection simultanée d'antigène capside et d'anticorps (anti NS3 et NS4) du virus de l'hépatite C dans un échantillon (sérum ou plasma) Le principe du test est basé sur une méthode immunoenzymatique de type sandwich pour la détection d'antigène et de type indirect pour la détection d'anticorps. Il repose sur les étapes suivantes : Une solution de sensibilisation est tout d'abord réalisée: # avec un mélange d'antigènes VHC : deux protéines recombinées produites par Escherichia coli à partir de clones sélectionnés dans les régions non structurales NS3 (clone NS3.1 : AA 1192-1492), et NS4 (clone 5-1-1 : AA 1694-1735) et # avec un anticorps monoclonal anti-capside (Acm 1 ), en tampon Tris 0,5M, pH 7,4 additionné de TCEP (Tris(2carboxyethyl)phosphine) à 20 mM. Les cupules d'une plaque de microtitrage (Nunc, Maxisorp) sont alors sensibilisées avec la solution ci-dessus à raison de 110 l par cupule. Les étapes suivantes sont identiques à celles du protocole 1 a. Protocole 1 c: Protocole de détection simultanée d'antigène capside et d'anticorps (anti-capside et anti NS3, NS4) du virus de l'hépatite C dans un échantillon (sérum ou plasma) Le principe du test est basé sur une méthode immunoenzymatique de type sandwich pour la détection d'antigène et de type indirect pour la détection d'anticorps. Il repose sur les étapes suivantes : Une solution de sensibilisation est tout d'abord réalisée: # avec un mélange d'antigènes VHC : un peptide muté C-G- G-Cap 1-75 (G31-G44-G47) (capside) comprenant la séquence SEQ ID n 5 et deux protéines recombinées produites par Escherichia coli à partir de clones sélectionnés dans les régions non structurales NS3 (clone NS3.1 : AA 1192-1492), et NS4 (clone 5-1-1 : AA 1694-1735) et # avec un anticorps monoclonal anti-capside (Acm 3), en tampon Tris 0,5M, pH 7,4 additionné de TCEP (Tris(2carboxyethyl)phosphine) à 20 mM. Les cupules d'une plaque de microtitrage (Nunc, Maxisorp) sont alors sensibilisées avec la solution ci-dessus à raison de 110 l par cupule. Les plaques de microtitrage sont mises à incuber pendant une nuit à température ambiante (18-24 C). Après élimination de la solution de sensibilisation, les plaques sont lavées à l'aide d'un tampon phosphate (0,01 M, pH 7. 4) contenant 0,1 % de Tween 20, puis saturées par addition d'un tampon phosphate (0,01 M, pH 7) contenant 5% de saccharose, 25% de lait écrémé (CandiaTM, France, ou tout autre lait écrémé équivalent du commerce) et 10mM d'EDTA. Dans chaque cupule, on distribue successivement 100 l de diluant de 1ère étape, contenant l'anticorps monoclonal anti-capside Acm 1 marqué à la peroxydase, puis 50 l d'échantillon (sérum ou plasma). Le milieu réactionnel est mis à incuber à 37 C pendant 1,5 heure. Les antigènes de capside du VHC éventuellement présents se fixent sur l'anticorps monoclonal de la phase solide Acm 3 et forment des complexes avec l'anticorps monoclonal anti-capside Acm 1 marqué à la peroxydase. De même, si des anticorps anti-VHC sont présents, ils se lient aux antigènes fixés sur la phase solide. Les étapes suivantes sont identiques à celles du protocole 1 a. Exemple 1 : Détection d'antigène capside du VHC dans un échantillon (sérum ou plasma), durant la fenêtre sérologique Des échantillons sériques ou plasmatiques, prélevés chez des patients contaminés par le VHC et rassemblés dans des panels commerciaux (Impath, USA), négatifs en détection anticorps et positifs en acide nucléique (PCR), ont été testés suivant la méthode décrite au protocole 1a. Les résultats reportés dans le Tableau 2 sont comparés à des résultats obtenus en PCR. Tableau 2 : Echantillon Densité optique Interprétation Test Anticorps Test PCR Impath 1866 0,616 Positif Négatif Positif 1883 (1/2) 0,661 Positif Négatif Positif 1889(1/2) 0,671 Positif Négatif Positif 1999 (1/2) 0,596 Positif Négatif Positif 2028 (1/2) 0,520 Positif Négatif Positif 2144 (1/2) 0,674 Positif Négatif Positif 2145 (1/2) 0,808 Positif Négatif Positif 2159 0,547 Positif Négatif Positif 1959 0,512 Positif Négatif Positif On constate que les résultats obtenus par la méthode selon l'invention sont directement corrélés aux résultats obtenus en PCR. L'invention décrite permet donc bien de détecter les antigènes de capside alors que les anticorps ne sont pas encore présents, c'est à dire dans la fenêtre sérologique. Exemple 2: Détection d'anticorps anti-capside dans des échantillon (sérums ou plasmas) négatifs en antigène VHC Des échantillons sériques ou plasmatiques, prélevés chez des patients contaminés par le VHC et rassemblés dans des panels internes et commerciaux, positifs en anticorps (capside) et négatifs en antigène (capside), ont été testés suivant les méthodes décrites dans les protocoles 1a et 1 b. En l'absence du peptide 1-75 (G34-G44-G47) (comprenant la SEQ ID n 4) sur la phase solide (protocole 1 b), les échantillons testés (spécifiques de la capside) ne sont pas détectés, alors qu'ils sont trouvés positifs avec le protocole 1a et dans un test anticorps classique (cf. Tableau 3). Tableau 3 : Echantillon Densité optique Interprétation Test 1a 1b 1a 1b Anticorps 16 0,942 0,092 Positif Négatif Positif 38 0,409 0,041 Positif Négatif Positif 49 3,246 0,080 Positif Négatif Positif KJ9-1102-0025 0,916 0,054 Positif Négatif Positif L'invention permet donc de détecter chez des sujets contaminés par le VHC des échantillons positifs en anticorps anti-capside, et négatifs en antigène capsidique. Exemple 3 : Détection simultanée d'antigène capsidique et d'anticorps anti-VHC dans un échantillon (sérum ou plasma) Deux panels d'échantillons de séroconversion PHV 907 et PHV 917 (c'est à dire deux séries de sérums ou plasmas, prélevés chez deux patients après infection par le VHC ou en cours de séroconversion) commercialisés par BBI (Boston Biomedica Company, USA) ont été testés suivant le protocole 1a (cf. Tableaux 4 et 5). Tableau 4 : Echantillon Jour de Densité Interprétation Test Anticorps Test PCR BBI prélève- optique -ment 907-1 0 0,482 Positif Négatif Positif 907-2 + 4 0,344 Positif Négatif Positif 907-3 +7 0,325 Positif Négatif Positif 907-4 + 13 0,318 Positif Négatif Positif 907-5 + 18 0,395 Positif Négatif Positif 907-6 + 21 0,855 Positif Positif Positif 907-7 +164 2,991 Positif Positif Positif Tableau 5 : : ~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~ Echantillon Jour de Densité Interprétation Test Anticorps Test PCR BBI prélève- optique ~~~~~ -ment 917-1 0 0,045 Négatif Négatif Négatif 917-2 13 0,803 Positif Négatif Positif 917-3 20 0,324 Positif Négatif Positif 917-4 22 0,448 Positif Négatif Positif 917-5 85 2,652 Positif Positif Négatif 917-6 131 2,582 Positif Positif Négatif 917-7 135 2,720 Positif Positif Positif 917-8 138 2,736 Positif Positif Négatif 917-9 146 3,023 Positif Positif Négatif 917-10 152 3,033 Positif Positif Négatif Dans les tableaux 4 et 5, on observe, de manière corrélée à la présence de l'ARN viral (test PCR), un signal positif en antigène avec le protocole 1 a selon l'invention ; de la même manière, une réponse positive est obtenue sur des prélèvements de séroconversion, positifs en anticorps et/ou en antigène. Ceci montre bien que les 2 détections (antigène capsidique et anticorps anti-capside) peuvent fonctionner simultanément dans le même essai, et sans interférence. De plus, l'invention décrite présente un intérêt tout particulier d'un point de vue diagnostique vis à vis de la PCR, car elle permet de détecter des échantillons négatifs en PCR et positifs en anticorps. Exemple 4 : Influence de la détection simultanée d'antigène capsidique et d'anticorps anti-VHC sur le diagnostic et la diminution de la fenêtre sérologique Huit panels de séroconversions commercialisés (BBI, Boston Biomedica, US), (Impath, US) ont été testés avec le protocole selon l'invention (désigné test Combo) en suivant les protocoles 1a et 1 c. Dans le tableau 6 sont reportés les résultats obtenus en détection d'antigène (test Elisa), ou d'ARN (PCR), et en détection d'anticorps sur ces différentes séroconversions. Pour 4 séroconversions sur 8, les protocoles 1a et 1 c permettent de détecter le premier prélèvement positif de façon concomitante à l'apparition de l'ARN viral détecté par la PCR. Le nombre de jours moyens, entre la détection d'antigène et la détection d'anticorps correspondant à la réduction de la fenêtre sérologique, est de 37 jours pour les deux protocoles 1a et 1c. Tableau 6 : Panel 1 er jour de Réduction de la dé-tection Retard (jours)/1er jour de détection fenêtre IMPATH/ sérologique BBI avec le test ~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~ Combo Ag VHC* ARN VHC Ac VHC Combo Combo Jours VHCla VHClc 6211 (NS3) 140 0 0 46 10 10 36 6225 (NS3) 45 0 0 33 2 2 31 6227 (CAP-NS3- 42 0 0 32 4 4 28 NS4) 6229 (NS3) 0 0 0 24 0 0 24 9041 (NS3) 24 0 0 38 3 3 35 907 (CAP) 0 0 0 13 0 0 13 6222 (CAP-NS3) 17 0 0 23 0 0 23 917 (CAP-NS3) 13 0 0 72 0 0 72 Moyenne = 37 * Résultats publiés par Icardi et al., (2001) Exemple 5 : Comparaison de performances et classement de diverses techniques sur des sérums de séroconversion 21 panels de séroconversion commercialisés (BBI, Boston Biomedica Company, USA ; Impath, USA), présentant des spécificités différentes ont été testés avec le test selon l'invention en suivant les protocoles 1 a et 1 c, et avec une série de tests commercialisés, qui sont en fait parmi les meilleurs selon le classement réalisé par la MDA (Medical Devices Agency) aux Etats-Unis en février 2002. Cette comparaison tient compte du nombre de jours de retard de détection par rapport à la détection d'ARN (test PCR). Ainsi la trousse présentant la plus petite moyenne générale est la plus performante en précocité de détection (tableau 7). Tableau 7 : Résultats exprimés en Jours de retard de détection par rapport à la PCR Panel Protocole Protocole Vitres Eci Axsym HCV "Ortho HCV 3. 0 short Access HCV Ab Antigène Impath/ la le anti-HCV version3 incubation" Plus cible BBI invention invention ~~~~~~~~~~~ ~~~~~~~~~ ~~~~~~~~ 907 0 0 13 18 18 13 CAP 909 0 0 28 28 28 CAP 912 4 4 7 7 7 7 CAP 913 2 7 7 CAP 914 0 0 16 16 16 16 CAP 6215 0 0 20 20 20 20 CAP Sous-total 4 4 86 106 96 91 904 9 9 9 9 9 18 NS3 6212 23 23 12 12 12 23 NS3 6224 19 19 19 19 19 19 NS3 9041 27 27 62 62 62 62 NS3 9044 0 0 25 21 25 25 NS3 9047 0 0 28 28 28 28 NS3 Sous-total 90 90 167 156 169 192 905 11 11 14 14 14 21 NS3/CAP 908 19 19 13 11 19 19 NS3/NS4 910 5 5 8 8 8 8 CAP/NS4 #fï? ô Ô Tl NS3/CAP ~ 917 72 72 72 NS3/CAP 6211 10 10 42 42 42 46 NS3/NS4 6213 32 26 26 26 32 32 CAP/NS3-NS4 6214 30 30 30 25 30 30 NS3/NS4 6222 0 0 21 21 21 21 CAP/NS3 Sous-total 107 101 184 219 238 249 Moyenne 9.6 20,8 22,9 24,0 25,3 générale|~~ Les résultats générés avec les protocoles 1a et 1c selon l'invention permettent une détection plus précoce de l'infection VHC (seulement 9,6 jours de retard en moyenne par rapport à la PCR pour le protocole 1a et 9,3 jours pour le protocole 1 c) et avant l'apparition des anticorps. Ainsi le test décrit selon l'invention obtient la première place dans ce classement et cela avec les deux protocoles 1a et 1c qui font appel à des couples d'anticorps et des peptides mutés différents. En conclusion, les résultats obtenus avec les protocoles 1 a et 1c selon l'invention montrent bien que cette dernière permet effectivement de détecter l'infection par le VHC très précocement, avec une sensibilité assez proche de celle de la PCR, tout en permettant de suivre l'évolution sérologique du patient après la séroconversion. - Alcon et al., J. of Clin. Microbiol., 2002, vol. 40 (2), pp. 376-381 - Atherton et al. (1989) "solid phase peptide synthesis, a practical approach", IRL Press, , Oxford University Press, pp. 25-34 - Benoit et al, (1982) PNAS USA, 79, pp. 917-921 - Berck et Schultz, (1986), Arch. Pathol. Lab. Med., 10, pp. 13-20 - Bukh, Semin. Liver Dis . (1995) 15 : 41-63 ; - Cerino et al., (1991), J. Immunology, Vol. 147 (8), pp. 2692-2696. - Clayes et al. (1995), J of Medical Virology, 45, pp. 273-281 - Garson et al., (1990) Lancet, 336, pp. 878-879; - Guyader et al. (1987) Nature 326, pp. 662-669 - Hajime Tokita et al. (2000) J. Clin. Microbiol, Vol. 38, pp. 3450-3452 - Harlow et al. (1988) ed., "Antibodies : a laboratory manual" - Hosein et al. (1991) PNAS Vol. 88, May, pp. 3647 - 3651 - Icardi et al. (2001) J. Clin. Microbiol., 39, pp. 3110-3114 - Ishida, (1993), J. Clin. Microbiol., Vol. 31, No. 4, , pp. 936-940. - Kôhler et Milstein, (1975) Nature, 256, pp. 495-497 - Leahy et al. (1991) Third International Symposium on HCV, Strasbourg, poster B35 - Maiolini et al., (1978) Journal of Immunological Methods, 20, pp. 25-34 - Marks et al. (1991) J. Mol. Biol, 222, pp. 581-597 - Merrifield (1963) J. Amer. Chem. Soc, , 85, pp. 2149-2154 ; - Nasoff et al. (1991) PNAS Vol. 88, No. 12, pp. 5462 - 5466, - Okamoto et al. (1990a) Japan J. Exp. Med., vol. 60 (3), pp. 167-177 - Okamoto et al. (1990b)Japan J. Exp. Med., vol. 60 (4), pp. 223-233 - Peterson et al. (2000) Vox sanguinis, Vol. 78, pp. 80-85, - Ratner et al. (1985) Nature, 313, pp. 277-284 - Sällberg et al. (1992) J. Clin. Microbiology, Vol. 30 (8), pp. 1989-1994 - Sanchez-Pescador et al. (1985) Science, 227, pp.484-492 - Scott et al. (1990),Science, 249, pp. 386-390 - Sheppard, dans Peptides 1971 , Nesvadba H (éd.) North Holland, Amsterdam, p. 111 - Shieh et al. (1991 ) Laboratory Investigation Vol. 65, No. 4, pp. 408 - 411 - Simmonds, (1995), Hepatology, , 21, pp. 570-583 - Stuyver et al. (1994), P. N.A.S. USA, 91, pp. 10134-10138 - Takahashi et al. (1992) J. Gen. Virol., Vol. 73(3), , London, pp. 667-672 - Wain-Hobson et al. (1985) Cell, 40, pp. 9-17 - Yang et al. (1995) Clin. Exp Immunol., 101, pp. 272-277 -Yang et al. (1999), J of Medical Virology, 57, pp. 345-350 1. Procédé de détection in vitro d'une infection par un microorganisme dans un échantillon biologique, comprenant la détection simultanée d'au moins un antigène dudit microorganisme et d'un anticorps dirigé contre ledit microorganisme, présents dans l'échantillon biologique, procédé comprenant a) la mise en présence de l'échantillon biologique avec un anticorps de capture dirigé contre ledit microorganisme, et un antigène de capture dérivé dudit microorganisme; b) l'incubation du mélange dans des conditions permettant la formation de complexes antigènes-anticorps ; c) la révélation des complexes antigènes-anticorps formés, qui met éventuellement en oeuvre un anticorps de détection, marqué, capable de se lier à l'antigène dudit microorganisme capturé et/ou éventuellement aussi un antigène de détection, marqué, capable de se lier à l'anticorps dirigé contre ledit microorganisme capturé; et dans lequel l'antigène de capture et/ou l'antigène de détection, marqué, dudit microorganisme est un fragment antigénique dudit microorganisme dont au moins un épitope est détruit; et l'anticorps de capture et/ou de détection reconnaît ledit épitope, intact, de l'antigène capturé. 2. Procédé selon la revendication 1, dans lequel le microorganisme est choisi dans le groupe constitué par les virus, les bactéries et les parasites microbiens. 3. Procédé selon la revendication 2, dans lequel le microorganisme est un virus de l'hépatite C (VHC). 4. Procédé selon la revendication 3, dans lequel l'antigène de capture est un fragment antigénique de la protéine de capside du VHC, dans lequel au moins un site épitopique est détruit. 5. Procédé selon la revendication 3, dans lequel l'antigène de capture est un fragment antigénique de la protéine non structurale du VHC NS3 ou NS4, dans lequel au moins un site épitopique est détruit. 6. Procédé selon l'une quelconque des revendications 3 à 5, dans lequel l'antigène de capture contient au moins deux sites épitopiques différents détruits. 7. Procédé selon l'une quelconque des revendications 3 à 6, dans lequel l'antigène de capture contient un site épitopique détruit par substitution d'au moins un acide aminé. 8. Procédé selon l'une quelconque des revendications 3 à 7, dans lequel ledit anticorps de capture et ledit antigène de capture sont immobilisés sur une phase solide. 9. Procédé selon l'une quelconque des revendications 3 à 8, dans lequel l'anticorps de détection est ajouté au mélange après que les complexes antigènes-anticorps se sont formés. 10. Procédé selon l'une quelconque des revendications 3 à 8, dans lequel l'anticorps de détection, et/ou l'antigène de détection, est mis en présence de l'échantillon biologique en même temps que l'anticorps de capture et l'antigène de capture. 11. Procédé selon la revendication 3, comprenant a) la mise en présence de l'échantillon biologique avec un anticorps de capture du VHC et un antigène de capture du VHC fixés sur une phase solide; b) l'incubation du mélange dans des conditions permettant la formation de complexes antigènes-anticorps ; c) la séparation de la phase solide et de la phase liquide ; d) la mise en contact de la phase solide avec, d'une part, un anticorps de détection, marqué, capable de lier l'antigène de VHC capturé, et d'autre part, un anticorps, anti immunoglobuline ou anti-isotype, ou un antigène de détection, marqué, capable de lier l'anticorps anti-VHC capturé, l'antigène de capture, et l'antigène de détection, d'anticorps antiVHC étant des fragments antigéniques de la protéine de capside du VHC, dont deux épitopes ont été détruits, et les anticorps de capture et de détection reconnaissant chacun un desdits épitopes, intacts, de l'antigène de capside capturé. 12. Procédé selon la revendication 11, où l'anticorps de capture et l'anticorps de détection reconnaissent chacun un épitope sélectionné dans le groupe d'épitopes de séquences suivantes : 44LGVR47, 30IVGGVYL36 et 29QIVGGV34. 13. Trousse utile pour la détection d'une infection par un microorganisme dans un échantillon biologique, comprenant : un antigène de capture ou de détection, qui est un fragment antigénique d'une protéine d'un microorganisme, ledit fragment comprenant au moins un épitope détruit, tout en conservant la capacité de lier les anticorps dirigés contre le microorganisme éventuellement présents dans l'échantillon biologique ; un anticorps dirigé contre ledit épitope, intact, de ladite protéine du microorganisme. 14. Trousse selon la revendication 13, le microorganisme étant le virus de l'hépatite C (VHC). 15. Trousse selon la revendication 14, dans laquelle ledit anticorps est un anticorps de capture de l'antigène de VHC présent dans l'échantillon biologique. 16. Trousse selon l'une des revendications 14 et 15, où l'anticorps reconnait un épitope sélectionné dans le groupe d'épitopes de séquences suivantes : 44LGVR47, 30IVGGVYL36 et 29QIVGGV34. 17. Trousse selon l'une des revendications 14 à 16, comprenant, outre l'antigène de capture, un moyen de détection desdits anticorps anti-VHC présents dans l'échantillon biologique et complexés audit antigène de capture. 18. Trousse selon la revendication 17, dans laquelle le moyen de détection est un anticorps anti immunoglobuline ou anti-isotype marqué. 19. Trousse selon l'une des revendications 15 à 18, dans laquelle l'anticorps de capture et l'antigène de capture sont présentés sous une forme immobilisée sur une phase solide. 20. Trousse selon la revendication 19, comprenant a) un antigène de capture qui est un fragment antigénique d'une protéine du VHC, ledit fragment comprenant au moins deux épitopes détruits, tout en conservant la capacité de lier les anticorps anti-VHC éventuellement présents dans un échantillon biologique ; b) un anticorps de capture dirigé contre l'un desdits épitopes, intacts, de ladite protéine du VHC; ledit antigène de capture et ledit anticorps de capture étant immobilisés sur une phase solide ; et Ci) un anticorps de détection, marqué, dirigé contre un autre desdits épitopes, intacts, de ladite protéine du VHC, et/ou C2) éventuellement un antigène de détection, marqué, qui est un fragment antigénique d'une protéine du VHC, ledit fragment comprenant au moins un épitope détruit, tout en conservant la capacité de lier les anticorps anti-VHC éventuellement présents dans un échantillon biologique . 21. Trousse selon la revendication 20, dans laquelle l'antigène de détection, marqué, est un fragment de la protéine de capside du VHC, fragment dont au moins un site épitopique est détruit. 22. Trousse selon l'une des revendications 14 à 20, dans laquelle l'antigène de capture est un fragment de la protéine de capside du VHC, fragment dont au moins un site épitopique est détruit, et l'anticorps reconnaît ledit site épitopique, intact, de la protéine de capside. 23. Peptide ou polypeptide issu de la protéine de capside du VHC, portant au moins un site épitopique intact et au moins un site épitopique détruit, ledit site épitopique détruit étant ainsi rendu incapable d'être reconnu par un anticorps anti-capside. 24. Peptide ou polypeptide selon la revendication 23 comprenant l'une quelconque des séquences SEQ ID n 4 à SEQ ID n 18.