Brevet FR2841247A1 — publié le 20031226

La présente invention est relative à la production de protéines d'intérêt dans des végétaux, et notamment à leur adressage vers le compartiment plastidial. Les plastes sont des organites intracellulaires des végétaux chlorophylliens (algues, mousses, et végétaux supérieurs). On distingue plusieurs types principaux de plastes, selon leur teneur en pigments, et la nature de ceuxci : les amyloplastes, riches en amidon, les chloroplastes dans lesquels les pigments principaux sont les chlorophylles, et les chromoplastes dont les pigments principaux sont des caroténoides. Ces trois catégories de plastes qui dérivent de précurseurs communs, les proplastes, ont une structure de base commune constituée par une double membrane emprisonnant le stroma plastidial. Dans les chloroplastes, il existe un troisième système membranaire formant à l'intérieur du stroma des saccules dénommées thylakoïdes. Outre leur rôle primordial dans la photosynthèse, les chloroplastes sont également impliqués dans des réactions d'oxydoréduction, par exemple la réduction des nitrites en ammonium. Les plastes jouent également un rôle essentiel dans la biosynthèse et/ou le stockage de nombreuses molécules, parmi lesquelles on citera l'amidon, les lipides, les caroténoides, la plupart des acides aminés, des hormones végétales (acide abscissique, précurseurs des gibbérellines, du jasmonate, etc.). Bien que les plastes possèdent leur propre génome codant pour une partie de leurs protéines, une grande partie des enzymes intervenant dans les différentes fonctions plastidiales sont codées par le génome nucléaire et importées dans les plastes. Cette importation s'effectue par un mécanisme spécifique, qui a plus particulièrement été étudié dans le cas des chloroplastes (pour revue cf. CHEN et SCHNELL, Trends Cell Biol. 9,222-227, 1999 ; KEEGSTRA et CLINE, The Plant Cell 11,557-570, 1999 ; SCHLEIFF et SOLL, Planta 211,449- 456,2000 ; JACKSON-CONSTAN et KEEGSTRA, Plant Physiol. 125, 1567-1676, 2001). Ce mécanisme fait intervenir un système d'import dans chacune des deux membranes plastidiales : dans la membrane externe, le complexe TOC (Translocon at Outer membrane of Chloroplast) qui comprend au moins trois protéines : Toc 86,75 et 34 (KESSLER et al., Science 266, 1035-1039,1994 ; PERRY et KEEGSTRA, Plant Cell 6,93-105, 1994) ; dans la membrane interne, le complexe TIC (Translocon at Inner membrane of Chloroplast) qui comprend au moins quatre protéines : Tic 110,55, 22 et 20 (KESSLER et BLOBEL, Proc. Natl. Acad. Sci. 93,7684-7689, 1996 ; LÜBECK et al., EMBO J. 15,4230-4238, 1996 ; CALIEBE et al., EMBO J. 16, 7342-7350,1997 ; KOURANOV et al., J. Cell Biol., 143,991- 1002,1998), ainsi qu'une protéine chaperonne dans le stroma : ClpC (AKITA et al., J. Cell Biol. 136,983-994, 1997 ; NIELSEN et al., EMBO J. 16,935-946, 1997). Un élément majeur de ce mécanisme est Toc75, qui est la protéine la plus abondante dans la membrane externe, et forme le pore central du canal de translocation situé dans cette membrane (SCHNELL et al., Science 266,1007-1012, 1994 ; TRANEL et al., EMBO J. 14,2436-2446, 1995). Toc75 interagit spécifiquement avec une séquence particulière, dénommée peptide d'adressage ou peptide de transit , localisée à l'extrémité N-terminale des protéines importées dans les plastes (MA et al., J. Cell Biol. 134,315-327, 1996) . De nombreux peptides d'adressage ont été identifiés dans les précurseurs des protéines adressées vers l'espace intermembranaire, la membrane interne, le stroma, et dans le cas des chloroplastes, vers la membrane du thylakoïde. Parmi les protéines connues pour posséder un peptide d'adressage intraplastidial clivable, on citera notamment des protéines adressées à l'espace intermembranaire, (Tic22: KOURANOV et al., 1998, précédemment cité ; KOURANOV et al., J. Biol. Chem. 274,25181-25194, 1999), des protéines adressées à la membrane interne (TPT(Triose-Pi/Pi translocator) : BRINK et al., J. Biol. Chem. 270,20808-20815, 1995), des protéines adressées au stroma (petite sous-unité de la ribulose-1,5-bisphosphate carboxylase (Rubisco) : DE CASTRO SILVA FILHO et al., Plant Mol. Biol. 30,769-780, 1996 ; anhydrase carbonique), des protéines adressées à la membrane du thylakoïde (LHCP(light harvesting complex) : LAMPPA et al., J. Biol. Chem. 263, 14996-14999,1988; Cfo-II: ATPase subunit) et à la lumière du thylakoïde (OEE1(Oxygen Evolving Element 1) : KO et CASHMORE, EMBO J. 8,3187-3194, 1989). Ces peptides d'adressage comprennent généralement entre 40 et 100 acides aminés, et possèdent pour la plupart d'entre eux, des caractéristiques communes : ils sont quasiment dépourvus d'acides aminés chargés négativement, tels que l'acide aspartique, l'acide glutamique, l'asparagine ou la glutamine ; leur région N-terminale est dépourvue d'acides aminés chargés, et d'acides aminés tels que la glycine ou la proline ; leur région centrale contient une proportion très élevée d'acides aminés basiques ou hydroxylés, tels que la sérine et la thréonine ; région C-terminale est riche en arginine et a la capacité de former une structure secondaire amphipathique, en feuillet bêta. Dans le cas des protéines adressées vers la lumière du thylakoïde, le peptide d'adressage est bipartite et comprend des informations additionnelles pour traverser la membrane du thylakoïde (DE BOER et WEISBEEK, Biochim. Biophys. Acta. 1071,221-253, 1991). Dans certains cas, ce peptide d'adressage bipartite peut aussi être retrouvé chez des protéines adressées vers la membrane du thylakoïde (KARNAUCHOV et al., J. Biol. Chem. 269,32871-32878, 1994). Dans tous les cas le peptide d'adressage est clivé après l'importation. Ce clivage est effectué par des protéases spécifiques ; protéase localisée dans le stroma (VANDERVERE et al., Proc. Natl. Acad. Sci. 92,7177- 7181,1995), et une protéase localisée dans la lumière du thylakoïde (CHAAL et al., J. Biol. Chem. 273,689-692, 1998) ont été décrites. Les protéines adressées à la membrane externe ne comportent généralement pas de peptide signal clivable ; l'information d'adressage est contenue dans la protéine mature (CLINE et HENRY, Annu. Rev. Cell Dev. Biol., 12,1-26, 1996) ; après leur synthèse dans le cytosol, ces protéines sont directement incorporées dans la membrane (VAN'T HOF et al, FEBS lett. 291,350-354, 1991 et J. Biol. Chem. 268, 4037-4042,1993 ; PINADUWAGE et BRUCE, J. Biol. Chem. 271, 32907-32915, 1996) par l'intermédiaire d'interactions, dont la nature demeure mal connue, avec la bicouche lipidique. La seule exception connue à ce jour concerne la protéine Toc75 ou (OEP75) dont l'adressage à la membrane externe nécessite la présence d'un peptide d'adressage N-terminal bipartite cl ivable (TRANEL et al., 1995, précédemment cité; TRANEL and KEEGSTRA, Plant Cell 8,2093-2104, 1996). Il est connu que l'utilisation des peptides d'adressage aux plastes est nécessaire pour introduire dans ceux-ci des protéines d'intérêt permettant d'agir sur diverses fonctions plastidiales notamment dans le but d'améliorer les caractéristiques de plantes d'intérêt agronomique, par exemple la biosynthèse des lipides, de l'amidon, des vitamines, des hormones ou des protéines par lesdites plantes, ou leur résistance aux maladies aux insectes ou aux herbicides. Par exemple, la Demande EP 189707 propose l'utilisation de peptides d'adressage clivables issus de précurseurs de protéines chloroplastiques, et en particulier du peptide d'adressage de la petite sous-unité de la ribulose-1,5-bisphosphate carboxylase, pour importer une protéine d'intérêt dans des chloroplastes ; la Demande PCT WO 00/12732 propose l'utilisation de peptides d'adressage de différentes protéines plastidiales pour importer des protéines d'intérêt dans des plastes. Les fonctions plastidiales pouvant être modifiées de la sorte, et les caractéristiques conférées par ces modifications sont très diverses. A des fins d'illustration non-limitative, on peut citer : - l'augmentation de la résistance aux herbicides, par expression du précurseur de l'acétolactate synthétase (ALS), (LEE et al. EMBO J., 7,1241-1248, 1988) d'acétolactate synthétase mutée (PRESTON et POWLES, Heredity 88,8-13, 2002) ; CHONG et CHOI, Biochem. Biophys. Res. Commun. 279,462-467, 2000), ou de la 3-énolpyruvylshikimate- 5-phosphate synthétase (EPSP synthétase)(KLEE et al., Mol. Gen. Genet., 210,437-442, 1987) - l'augmentation de la résistance à différents stress, par expression de la zéaxanthine époxidase, (SEO et al., Trends Plant Sci., 7,41-48, 2002), de la choline monooxygénase (SHEN et al., Sheng Wu Gong Cheng Xue Bao, 17, 1-6,2001), du produit du gène ERD1~ARATH (KIYOSUE et al., Biochem. Biophys. Res. Commun., 15,196, 1214-1220,1993), de la ferrochélatase (CHOW et al., J. Biol. Chem., 31,272, 27565-27571,1997), de l'omega-3 acide gras désaturase (IBA et al., Tanpakushitsu Kakusan Koso, 39,2803-2813, 1994 ; MURAKAMI et al., Science 21,287(5452), 476-479,2000), de la glutamine synthétase (FUENTES et al., J. Exp. Bot., 52,1071- 1081,2001) la modification du métabolisme des plastes, pour augmenter la capture d'énergie lumineuse, (GAUBIER et al., Mol. Gen. Genet., 1,249, 58-64,1995), les capacités de photosynthèse et de croissance, (MIYAGAWA et al., Nature Biotech., 19,965-969, 2001), la teneur en caroténoïdes (HUGUENEY et al., Eur. J. Biochem., 1,209, 399-407,1992 ; MANN et al., Nature Biotech., 18,888-892, 2000), ou la teneur en différentes substances d'intérêt, telles que l'amidon (Demande PCT WO 00/11144), des acides aminés essentiels (MUEHLBAUER et al., Plant Physiol., 106,1303- 1312,1994), la provitamine A (ROMER et al., Nature Biotech., 18, 666-669, 2000), des hormones (JOYARD et al., Plant Physiol. 118,715-723, 1998), etc. - la surexpression et l'adressage chloroplastique de protéines utilisables à des fins de bioremédiation (détoxification ou dépollution des sols contaminés) telles que la ferritine, (LOBREAUX et al., Biochem. J., 15, 288(Pt 3), 931-939, 1992), les protéines de la famille des phytochélatines (CAZALE et CLEMENS, FEBS 507,215-219, 2001 ; TSUJI et al., BBRC 293,653-659, 2002), etc. Tous les peptides d'adressage intraplastidial connus dans l'art antérieur permettent d'importer une protéine dans les plastes par l'intermédiaire des systèmes membranaires d'import TOC et TIC, comme indiqué ci-dessus. Il a été constaté que l'utilisation de ces peptides pour l'adressage de protéines d'intérêt dans le chloroplaste pouvait, notamment dans les cas où la construction peptide d' adressage/protéine d' intérêt est placée sous contrôle d'un promoteur fort tel que le promoteur 35S, présenter l'inconvénient de saturer ces systèmes d'import, en entrant en compétition avec les protéines adressées naturellement au chloroplaste. Il en résulte des fuites se traduisant au bout de quelques jours par la présence de la protéine d'intérêt dans d'autres compartiments subcellulaires comme le cytoplasme. Il serait souhaitable de disposer de peptides d'adressage intraplastidial, qui ne dépendraient pas du système d'import TOC/TIC, et permettraient donc d'éviter les inconvénients mentionnés ci-dessus. Lors de travaux précédents visant à identifier, par une approche protéomique, des protéines de préparations de membranes de chloroplastes d'épinard, les Inventeurs ont identifié, entre autres, des peptides possédant une similitude de séquence importante avec une protéine putative de 41 kDa d'Arabidopsis (numéro d'accès TrEMBL Q9SV68) (SEIGNEURIN-BERNY et al., Plant. J. 19,217-228, 1999 ; FERRO et al., Electrophoresis 21,3517-3526, 2000). En poursuivant leurs travaux afin de mieux caractériser la protéine d'Arabidopsis, et son homologue chez l'épinard, les Inventeurs ont constaté que, de manière surprenante, bien qu'il s'agisse de protéines synthétisées dans le cytoplasme et importées au niveau de la membrane interne du chloroplaste, leur importation s'effectuait sans clivage d'un peptide d'adressage ; en outre, l'analyse de séquences de ces protéines ne fait apparaître aucune séquence possédant les caractéristiques des peptides d'adressage plastidial connus. Les protéines de la famille représentée par la protéine de 41 kDa d'Arabidopsis, et la protéine homologue d'épinard sont désignées ci-après sous la dénomination IE41 (IE pour Inner Envelope selon la nomenclature classiquement utilisée pour ce système membranaire). La séquence de la protéine IE41 d'Arabidopsis est représentée dans la liste de séquences en annexe sous le numéro SEQ ID N0:1 ; la séquence de l'ADNc codant pour la protéine IE41 d'épinard est représentée dans la liste de séquences en annexe sous le numéro SEQ ID NO:2, et la séquence polypeptidique correspondante est représentée dans la liste de séquences en annexe sous le numéro SEQ ID NO:3. Les Inventeurs ont recherché quelles étaient les régions des protéines IE41 impliquées dans leur adressage plastidial, et ont identifié une région de 41 acides aminés (résidus 60 à 100) essentielle à cet adressage. La séquence de cette région est représentée dans la liste de séquences en annexe sous le numéro SEQ ID NO: 4 pour la protéine IE41 d'Arabidopsis, et sous le numéro SEQ ID NO: 5 pour la protéine IE41 d'épinard. Ils ont en outre constaté que lorsque des fragments d'IE41 contenant cette région étaient fusionnés à l'extrémité N-terminale d'une protéine hétérologue, la protéine recombinante résultant de cette fusion était adressée aux chloroplastes de manière similaire à la protéine IE41 entière. La présente invention a pour objet un polypeptide d'adressage intraplastidial caractérisé en ce qu'il comprend : un domaine A constitué par un polypeptide présentant au moins 60%, de préférence au moins 70%, avantageusement au moins 80%, et de manière tout à fait préférée au moins 90% d'identité, ou au moins 65%, de préférence au moins 75%, avantageusement au moins 85%, et de manière tout à fait préférée au moins 95% de similarité, avec l'un des polypeptides SEQ ID NO: 4 ou SEQ ID NO: 5 ; et au moins un domaine choisi parmi : - un domaine B situé à l'extrémité N-terminale du domaine A, et constitué par un fragment de l'un des polypeptides SEQ ID NO: 1 ou SEQ ID NO: 3 comprenant au moins les acides aminés 49 à 59, de préférence au moins les acides aminés 39 à 59, avantageusement au moins les acides aminés 29 à 59, de manière tout à fait préférée au moins les acides aminés 19 à 59, et de manière particulièrement avantageuse au moins les acides aminés 9 à 59 dudit polypeptide, ou bien par un polypeptide présentant au moins 60%, de préférence au moins 70%, avantageusement au moins 80%, et de manière tout à fait préférée au moins 90% d'identité, ou au moins 65%, de préférence au moins 75%, avantageusement au moins 85%, et de manière tout à fait préférée au moins 95% de similarité, avec ledit fragment ; - un domaine C situé à l'extrémité C-terminale du domaine A, et constitué par un fragment de l'un des polypeptides SEQ ID NO: 1 ou SEQ ID NO: 3 comprenant au moins les acides aminés 101 à 111, de préférence au moins les acides aminés 101 à 121, avantageusement au moins les acides aminés 101 à 131, de manière tout à fait préférée au moins les acides aminés 101 à 141, et de manière particulièrement avantageuse au moins les acides aminés 101 à 151 dudit polypeptide, ou bien par un polypeptide présentant au moins 60%, de préférence au moins 70%, avantageusement au moins 80%, et de manière tout à fait préférée au moins 90% d'identité, ou au moins 65%, de préférence au moins 75%, avantageusement au moins 85%, et de manière tout à fait préférée au moins 95% de similarité, avec ledit fragment. Les pourcentages d'identité ou de similarité mentionnés ici sont déterminés à l'aide du logiciel BLASTp (ALTSCHUL et al., Nucleic Acids Res. 25,3389-3402, 1997), en utilisant les paramètres par défaut. Les domaines A, B, et/ou C définis ci-dessus peuvent provenir d'une même protéine IE41 ; ils peuvent également provenir de protéines IE41 d'origines différentes. La présente invention a également pour objet tout polypeptide chimérique résultant de la fusion d'un polypeptide d'adressage intraplastidial conforme à l'invention avec un polypeptide hétérologue. Ledit polypeptide hétérologue peut être n'importe quel polypeptide d'intérêt que l'on souhaite introduire dans les plastes. De préférence, le polypeptide d'adressage intraplastidial conforme à l'invention est placé à l'extrémité N-terminale du peptide hétérologue. Il pourrait toutefois être également placé à l' intérieur de celui-ci, ou bien à son extrémité Cterminale. La présente invention a également pour objet l'utilisation d'un polypeptide d'adressage intra-plastidial conforme à l'invention pour l'importation d'une protéine d'intérêt dans des plastes, et avantageusement, pour l'adressage de ladite protéine à la membrane interne plastidiale. Selon un mode de mise en #uvre préféré de la présente invention, ledit polypeptide d'adressage intraplastidial est utilisé pour l'importation de ladite protéine d'intérêt dans des chloroplastes. En particulier, la présente invention a pour objet un procédé pour importer une protéine d'intérêt dans des plastes caractérisé en ce qu'il comprend l'expression, dans une cellule végétale contenant lesdits plastes, d'un polypeptide chimérique résultant de la fusion d'un polypeptide d'adressage intraplastidial conforme à l'invention avec un polypeptide hétérologue. La présente invention a également pour objet : - tout polynucléotide codant pour un polypeptide d'adressage intraplastidial ou pour un polypeptide chimérique conforme à l'invention ; - toute cassette d'expression recombinante comprenant un polynucléotide conforme à l'invention placé sous contrôle de séquences appropriées de régulation de la transcription (notamment promoteur et terminateur de transcription). - tout vecteur recombinant résultant de l'insertion, dans un vecteur-hôte approprié, d'un polynucléotide ou d'une cassette d'expression conforme à l'invention. La présente invention a aussi pour objet des cellules-hôtes hébergeant un polynucléotide, une cassette d'expression, ou un vecteur recombinant conforme à l'invention. La présente invention englobe également des plantes transgéniques génétiquement transformées par un polynucléotide ou une cassette d'expression conforme à l'invention, ainsi que les descendants de ces plantes. L'invention comprend également les cellules et tissus végétaux, ainsi que les organes ou parties de plantes, y compris feuilles, tiges, racines, fleurs, fruits, et/ou graines obtenues à partir de ces plantes. Les techniques classiques de construction de vecteurs recombinants, de transformation de cellules ou d'organismes hôte, et de production de protéines recombinantes, sont utilisables pour la mise en #uvre de la présente invention. Le choix du vecteur-hôte, et des séquences de régulation de l'expression seront effectuées notamment en fonction de la méthode de transformation et de la plante hôte choisies, et/ou du type de cellule ou de tissu dans lequel on souhaite obtenir l'expression. De très nombreux promoteurs utilisables pour l'expression dans des cellules végétales sont connus en euxmêmes. A titre d'exemples, on peut choisir un promoteur constitutif, tel que le promoteur 35S du CaMV ou ses dérivés, ou le promoteur de l'actine ou de l'ubiquitine, etc. On peut également choisir un promoteur inductible ou bien un promoteur tissu-spécifique, afin de n'effectuer l'adressage plastidial de la protéine d'intérêt qu'à certains stades du développement de la plante, dans certaines conditions environnementales, ou dans certains tissus-cibles. Par exemple, si l'on souhaite obtenir préférentiellement un adressage de la protéine d'intérêt vers les chloroplastes, on exprimera un polypeptide chimérique conforme à l'invention sous contrôle d'un promoteur spécifique de tissus ou organes riches en plastes. A titre d'exemples, les promoteurs du virus de la Chlorelle régulant l'expression du gène de l'adénine méthyltransférase (MITRA et HIGGINS, Plant Mol. Biol. 26,85-93, 1994) ou celui du virus de la mosaïque du manioc (VERDAGUER et al., Plant Mol. Biol. 37,1055-1067, 1998) s'expriment principalement dans les tissus verts. Les éléments régulateurs du promoteur du gène 2A11 de la tomate permettent une expression spécifique dans les fruits (VAN HAAREN et HOUCK, Plant Mol. Biol. 17,615- 630,1991), etc. Des méthodes de transformation de cellules végétales ou de plantes entières sont bien connues en ellesmêmes : à titre d'exemples non-limitatifs, on citera la transformation de protoplastes en présence de polyéthylèneglycol, l'électroporation, l'utilisation d'un canon à particules, la micro-injection cytoplasmique ou nucléaire, ou la transformation par l'intermédiaire d'Agrobacterium. La présente invention peut être mise en #uvre dans les applications usuelles des peptides d'adressage aux plastes, et notamment dans celles mentionnées plus haut, pour agir sur diverses fonctions plastidiales. Il s'agit, en particulier, de la modification de fonctions propres à la membrane interne de l'enveloppe, par exemple, les biosynthèses de pigments, de quinones, d'acides gras, de vitamines et de précurseurs d'hormones végétales, mais aussi, l'import de tous les ions et métabolites vers le plaste. Les caractéristiques des peptides d'adressage plastidial conformes à l'invention, qui sont très différentes de celles des peptides d'adressage plastidial connus permettent de supposer que les peptides d'adressage conformes à l'invention utilisent un système d'import différent de celui impliquant les protéines TOC et TIC. De ce fait, les protéines d'intérêt adressées aux plastes à l'aide d'un peptide d'adressage conforme à l'invention n'entreraient pas en compétition avec les protéines naturellement adressées vers le plaste par l'intermédiaire du système TOC et TIC, et ne satureraient pas ce dernier. Ceci permettrait notamment d'éviter les fuites dans les autres compartiments subcellulaires, et de conserver les protéines d'intérêt dans le chloroplaste, même après plusieurs jours d'expression. Ceci permettrait également d'adresser vers les plastes des protéines pour lesquelles l'import classique grâce à une séquence d'adressage clivable en N-terminal et utilisant le système TIC/TOC, ne serait pas fonctionnel. La présente invention sera mieux comprise à l'aide du complément de description qui va suivre, qui se réfère à des exemples non-limitatifs illustrant l'obtention et la caractérisation de peptides d'adressage plastidial conformes à l'invention et leur mise en #uvre pour l'importation de protéines hétérologues dans les chloroplastes. EXEMPLE 1 : CARACTERISATION ET CLONAGE DE LA PROTEINE IE41 D'ARABIDOPSIS THALIANA Lors de travaux antérieurs visant à identifier les protéines les plus hydrophobes de préparations de membranes chloroplastiques d'épinard (SEIGNEURIN-BERNY et al., Plant. J., 19, p.217-228, 1999 ; FERRO et al., Electrophoresis, 21,3517-3526, 2000), plusieurs peptides dérivant d'une protéine de 41, kDa présentant une forte similarité de séquence avec une protéine putative d'Arabidopsis (Numéro d'accession TrEMBL Q9SV68) ont été mis en évidence. Cependant, l'analyse de la séquence primaire de cette protéine de 41 kDa à l'aide du programme TMPred (HOFMANN et STOFFEL, Biol. Chem. Hoppe-Seyler., 347,166, 1993), n'a pas permis de détecter de segments transmembranaires pouvant assurer l'ancrage de la protéine dans une bicouche lipidique. Pour confirmer la localisation de cette protéine dans l' enveloppe du chloroplaste, l' ADNc correspondant a été cloné et la protéine recombinante sur-exprimée chez E. coli afin d'obtenir des anticorps polyclonaux dirigés contre cette protéine. Expression chez E. coli L'ADNc codant pour la protéine de 41 kDa d'Arabidopsis est obtenu par PCR, à partir d'une librairie d'ADNc d'Arabidopsis, en utilisant les amorces suivantes . TCACATATGGCTGGAAAACTCAATGCAC (SEQ ID NO . 10) qui permet d'introduire un site de restriction NdeI (souligné) à l'extrémité 5' de l'ADNc ; ATGGATCCAACGCTCTTATGGCTCGAC (SEQ ID NO . 11) qui permet d'introduire un site de restriction BamHI (souligné) à l'extrémité 3' de l'ADNc. Le fragment d'amplification est cloné dans le plasmide pBluescript KS-. L'insert est ensuite digéré par les enzymes de restriction Ndel et BamHI, et inséré dans le vecteur d'expression pET-15b (NOVAGEN). Le vecteur résultant permet l'expression d'une protéine recombinante ayant une extension polyhistidine (Histag) à son extrémité N-terminale [(His-tag)-P41]. Ce vecteur est utilisé pour transformer des bactéries E. coli, souche BLR(DE3). Les bactéries recombinantes sont mises en culture dans 500 ml de milieu LB contenant 100 g/ml d' ampicilline à 37 C. Quand la densité optique à 600 nm (CO600) de la culture d'E. coli atteint 0,6, on ajoute de l'IPTG (isopropyl-p-D- galactothiopyranoside) à une concentration finale de 1 mM, pour induire l'expression de la protéine de 41 kDa. Après 3 heures de culture, les cellules sont centrifugées pendant 2 mn à 13 000 rpm (EPPENDORF 5415D). Le culot est remis en suspension dans 20 ml de tampon de lyse (50 mM NaH2PO4, 300 mM Na Cl, 10 mM imidazole, pH 8) et les bactéries sont lysées par sonication (sonicateur OMRON, type STP.YM.220.VAC, 6x1 mn, 0 C). Après sonication, l'extrait protéique total est analysé par SDS-PAGE 12%. Les gels sont colorés au bleu de Coomassie (R-250, BIORAD). Les résultats sont illustrés par la figure 1A : Légende de la figure 1A : pET-15b = bactéries transformées par le plasmide non recombinant (contrôle négatif) pET-15b + insert = bactéries transformées par le plasmide recombinant - = pas d'induction par IPTG + = induction par IPTG * = bande correspondant à la protéine de 41 kDa recombinante Après induction par l'IPTG, la protéine recombinante est fortement exprimée dans les bactéries transformées par le plasmide pET-15b comprenant l'insert d' ADNc d'Arabidopsis. Solubilisation de la protéine recombinante Le culot bactérien est mis en suspension dans 1 ml de tampon Tris/HCl 20 mM, pH 6,8 puis lysé par sonication (sonicateur OMRON, type STP.YM.220.VAC, 6x1 mn, 0 C). Après sonication, une première centrifugation (2 mn, 13 000 rpm) de l'extrait protéique total permet d'isoler les protéines solubles du surnageant. Les protéines insolubles du culot sont mises en suspension dans 1 ml d'un tampon contenant du détergent (20 mM Tris/HCl pH 6,8, 0,5% Triton X-100). Une seconde centrifugation permet d'isoler les protéines membranaires solubilisées par le Triton X-100. Les protéines non solubilisées sont,remises en suspension dans 20 mM Tris/HCl, pH 6,8 et analysées. Les différentes fractions sont analysées par SDS-PAGE 12%, comme indiqué cidessus. Les résultats sont illustrés par la figure 1B : Légende de la figure 1B : pET-15b = bactéries transformées par le plasmide non recombinant (contrôle négatif) pET-15b + insert = bactéries transformées par le plasmide recombinant S = protéines solubles D = protéines solubilisées dans le Triton X-100 I = protéines non solubilisées dans le Triton X-100 * = bande correspondant à la protéine de 41 kDa recombinante On note que la protéine recombinante (*) se retrouve dans 2 fractions distinctes : une fraction hydrosoluble présente dans le cytosol d'E. coli et une fraction insoluble, qui n'est pas solubilisée par le Triton X-100, ce qui indique qu'elle est probablement agrégée sous forme de corps d'inclusion. Purification de la protéine recombinante La fraction soluble de la protéine (His-tag)-P41 recombinante est purifiée par chromatographie d'affinité. Après centrifugation (10 mn à 6 000 rpm, EPPENDORF 5415D), le surnageant est déposé sur une colonne d'affinité His-bind resin , (NOVAGEN) de 2,5 ml chargée avec 13 ml de tampon de charge (50 mM NiS04) et équilibrée par 5 ml de tampon d'équilibrage (20 mM Tris/HCl pH 7,9,5 mM imidazole, 0,5 M NaCl). La colonne est lavée avec 2 volumes contenant 35 mM imidazole, et 2 volumes de tampon de lyse contenant 60 mM imidazole (L2). La protéine est éluée avec 6 volumes de tampon de lyse contenant 250 mM imidazole. Les différentes fractions sont analysées par SDS-PAGE 12% et révélées au bleu de Coomassie. Les résultats sont illustrés par la figure 2. Légende de la figure 2 : C = culot bactérien dilué dans le tampon de lyse (10 l) S = protéines bactériennes solubles (10 l) P = protéines non fixées (10 l) L, Ll, L2 = lavages avec le tampon de lyse (35 et 60 mM imidazole) (15 (il) Elution = fraction éluée en présence de 250 mM imidazole. Production d'anticorps polyclonaux La protéine recombinante (His-tag)-P41 purifiée, est dessalée (colonne SEPHADEX G25) et stockée à -80 C. Cette protéine recombinante est utilisée pour immuniser des lapins afin de produire des anticorps polyclonaux dirigés contre la protéine de 41 kDa d'Arabidopsis. EXEMPLE 2 : LOCALISATION DE LA PROTEINE DE 41 KDA DANS LES CHLOROPLASTES Lors de la procédure de purification, la protéine de 41 kDa se comporte comme une protéine hydrosoluble et faiblement hydrophobe, ce qui pose la question de son association effective avec l'enveloppe du chloroplaste. Sa localisation sub-cellulaire a donc été vérifiée par analyse de différentes fractions chloroplastiques. Des chloroplastes bruts sont obtenus à partir de 3-4 kg de feuilles d'épinard (Spinacia oleracea L. ) et sont purifiés par centrifugation isopycnique sur gradient de Percoll (DOUCE et JOYARD, Methods in chloroplast Molecular Biology. Edelman, M., Hallick, R. and Chua, N.-H., eds. (Amsterdam : Elsevier Science Publishers BV), 239-256, 1982). A ce stade, des inhibiteurs de protéases (1 mM PMSF, 1 mM benzamidine et 0,5 mM acide amino caproïque) sont ajoutés afin d'empêcher toute dégradation protéique. Les chloroplastes purifiés sont lysés dans un milieu hypotonique, et les membranes de l'enveloppe sont purifiées à partir du lysat par centrifugation sur gradient de sucrose (DOUCE ET JOYARD, 1982, précité). Des sous-fractions d'enveloppe respectivement enrichies en membranes externes et internes sont obtenues selon le protocole décrit par BLOCK et al. (J. Biol. Chem., 258, 13273-13280, 1983). Toutes les étapes ci-dessus sont réalisées entre 0 et 5 C. Les fractions obtenues sont stockées en azote liquide dans 50 mM MOPS-NaOH, pH 7,8, en présence d'inhibiteurs de protéases (1 mM benzamidine et 0,5 mM acide amino caproïque). Analyse des fractions chloroplastiques Les analyses par SDS-PAGE des chloroplastes totaux, ou de leurs fractions membranes d'enveloppe, stroma, membranes des thylakoïdes ; 15 g) ainsi que des des sousfractions d'enveloppe de chloroplastes (15 g) sont effectuées comme décrit par CHUA (Methods Enzymol., 69,434- 436, 1980). Les gels de résolution et de concentration (12- 15% acrylamide), comme le tampon de migration, contiennent 0,1% de SDS. Les peptides sont révélés soit par le bleu de Coomassie (MANIATIS et al., Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, NY, 1982) soit par le nitrate d'argent (MERRIL et al., Anal. Biochem., 110,201-207, 1981). Pour les analyses par Western blot, la protéine de 41 kDa est détectée en utilisant les anticorps polyclonaux dirigés contre la protéine recombinante d' Arabidopsis produite comme décrit à l'exemple 1, marqués à la phosphatase alcaline. Les résultats sont représentés sur la figure 3A. Légende de la figure 3A : C = protéines du chloroplaste E = protéines des membranes d'enveloppe S = protéines du stroma T = protéines des membranes des thylakoïdes Ces résultats montrent que la protéine de 41 kDa est associée uniquement avec l'enveloppe du chloroplaste et n'est pas détectée dans le stroma ni dans les thylakoïdes. Les chloroplastes intacts purifiés sont dépourvus de protéines du cytosol qui peuvent contaminer la préparation (DOUCE et JOYARD, 1980, précité). Toutefois, la protéine de 41 kDa pourrait interagir spécifiquement avec la membrane externe de l'enveloppe du chloroplaste et pourrait ainsi être co-purifiée avec les préparations d'enveloppe. Afin d'exclure cette possibilité, 20 g d'enveloppe issue de chloroplastes intacts sont traités avec la thermolysine de Bacillus thermoproteolyticus (0,20, 50 et 100 g/ml) afin de digérer les polypeptides localisés sur la face externe de la membrane externe de l'enveloppe (JOYARD et al., J. Biol. Chem., 258, 10000-10006, 1983). A titre de contrôle, des protéines d'enveloppe solubilisées subissent le même traitement protéolytique. La présence de la protéine de 41 kDa est détectée par Western blot, comme décrit ci-dessus. Les résultats sont représentés dans les figures 3B et 3C. Légende des figures 3B et 3C : 0 = absence de thermolysine 20 = thermolysine à 20 g/ml 50 = thermolysine à 50 g/ml 100 = thermolysine à 100 g/ml La protéine de 41 kDa n'est pas affectée par le traitement par la thermolysine (figure 3B), alors que le même traitement protéolytique réalisé sur des protéines d'enveloppe solubilisées montrent la sensibilité de la protéine de 41 kDa au traitement par la thermolysine (figure 3C). Ce résultat exclut l'hypothèse selon laquelle la protéine de 41 kDa serait localisée sur la face externe de la membrane externe. De fait, la protéine de 41 kDa n'est pas une protéine du cytosol contaminant les préparations d'enveloppe de chloroplaste. Des sous-fractions d'enveloppe respectivement enrichies en membranes externes et internes sont utilisées pour préciser la sous-localisation de la protéine de 41 kDa au niveau de la membrane de l'enveloppe du chloroplaste. La nature de ces sous-fractions d'enveloppe a été confirmée par l'utilisation des marqueurs IE18 et OEP24, qui sont respectivement des protéines intrinsèques de la membrane interne et externe de l'enveloppe du chloroplaste. Les protéines IE18 et OEP24 sont détectées en utilisant des anticorps polyclonaux dirigés spécifiquement contre chacune de ces protéines. Les résultats sont représentés dans la figure 3D. Légende de la figure 3D : E = protéines des membranes de l'enveloppe OM = protéines de la membrane externe IM = protéines de la membrane interne La protéine de 41 kDa se retrouve, comme la protéine IE18, uniquement dans les préparations d'enveloppes chloroplastiques enrichies en membrane interne. L'ensemble des résultats représentés dans les figures 3A-3D montre que la protéine de 41 kDa est localisée au niveau de la membrane interne de l'enveloppe du chloroplaste. D'après la nomenclature classique, cette protéine de l'enveloppe interne, présentant une masse théorique en électrophorèse sur gel de polyacrylamide, de 41 kDa, est dénommée IE41 (pour Inner Envelope Protein of 41 kDa ). Analyse des interactions entre la protéine IE41 et la membrane interne de l'enveloppe du chloroplaste Pour analyser plus précisément le mode d'interaction de la protéine IE41 avec la membrane interne des chloroplastes, différentes hypothèses ont été testées : 1) La protéine IE41 serait une protéine soluble localisée dans l'espace intermembranaire situé entre les membranes externe et interne de l'enveloppe du chloroplaste. Cette protéine serait co-purifiée avec les préparations d'enveloppe, et séquestrée dans les vésicules d'enveloppe. Dans ce cas la sonication des vésicules d'enveloppe permettrait la libération de IE41. Pour tester cette première hypothèse, des protéines d'enveloppe (500 g) sont solubilisées dans 50 mM MOPS, pH 7,8 (500 l).Les vésicules d'enveloppe sont soniquées pendant 10 sec puis centrifugées (20 mn à 72 000 g, Beckman L2 65B, rotor SW28) afin de séparer les protéines solubles et membranaires. Chaque fraction (20fil) est analysée par SDS-PAGE 12% (révélation : bleu de Coomassie) et Western blot. Les résultats sont représentés dans la figure 4A. Légende de la figure 4A : - = pas de sonication + = sonication S = protéines solubles I = protéines de membrane Les analyses par SDS-PAGE et Western blot des fractions d'enveloppe traitées montrent que la protéine IE41 n'est pas solubilisée après sonication des vésicules d'enveloppe. Au contraire, les protéines majeures solubles du stroma (RbcL) qui sont séquestrées dans les vésicules d'enveloppe, et qui sont connues pour contaminer les fractions d'enveloppe, sont solubilisées par ce traitement. Ceci montre que la protéine IE41 n'est ni une protéine soluble de l'espace intermembranaire, ni une protéine soluble du stroma contaminant la fraction d'enveloppe purifiée. 2) La protéine IE41 peut être liée à la membrane interne : - par ancrage à la bicouche lipidique ou insertion partielle dans celle-ci ; dans ce cas, seule l'utilisation de détergent peut permettre la solubilisation de la protéine IE41 ; - par des interactions électrostatiques avec une ou plusieurs protéines membranaires ou la surface polaire de la bicouche lipidique dans ce cas, ces interactions peuvent être rompues, et la protéine IE41 solubilisée, par un traitement alcalin ou par de fortes concentrations salines. Pour déterminer le type d'interactions impliquées dans la liaison de IE41 avec la membrane interne, les expérimentations suivantes ont été effectuées : a) solubilisation par le Triton X-100 : Des vésicules d'enveloppe (0,8 mg) sont diluées dans 1 ml de 50 mM MOPS, pH 7,8 contenant 0,05, 0,1 ou 0,2% (v/v) de Triton X-100. Après incubation pendant 30 mn à 4 C, le mélange est centrifugé pour séparer les protéines solubles et membranaires. Toutes les fractions (20 l) sont analysées par SDS-PAGE 12% (révélation : bleu de Coomassie) et Western blot. Les résultats sont illustrés par la figure 4C. Légende de la figure 4C : Mix = vésicules d'enveloppe purifiées M = protéines membranaires d'enveloppe S = protéines solubles d'enveloppe Ces résultats montrent que la protéine IE41 peut être totalement solubilisée par des concentrations de Triton X-100 (0,2%), beaucoup plus faibles que celles (de l'ordre de 2%) qui sont nécessaires pour solubiliser les protéines intrinsèques. b) solubilisation par traitement alcalin ou par traitement salin. Des vésicules d'enveloppe purifiées (500 g) sont incubées 30 mn à 4 C dans différents milieux (500 (il) 1) 10 mM MOPS, pH 7,8 + 0,5 M NaCl ; 2) 10 mM MOPS, pH 7,8 + 0,5 M KI ; 3) 0,1 M Na2CO3, pH 11 ; 4) 0,1N NaOH, puis soniquées et centrifugées comme décrit cidessus afin de séparer les protéines solubles et membranaires. Toutes les fractions sont analysées (20 l) par SDS-PAGE 12% (révélation : bleu de Coomassie) et Western blot (détection avec les anticorps polyclonaux dirigés contre la protéine IE41 d'Arabidopsis (dilution 1/5 000) ou dirigés contre la protéine IE18 (dilution 1/5 000). Les résultats sont représentés dans la figure 4B Légende de la figure 4B : + = sonication (10 sec) NaCl 0,5 M = traitement 1 KI 0,5 M = traitement 2 0,1M Na2C03, pH 11 = traitement 3 0,1 N NaOH = traitement 4 S = fraction de protéines solubles I = fraction de protéines insolubles Ces résultats montrent que la protéine IE41 est au moins en partie solubilisée par les traitements salins (KI, NaCl) ou alcalins modérés (Na2C03) , qui sont sans effet sur la protéine intrinsèque IE18, cette dernière ne pouvant être solubilisée que par un traitement alcalin fort (NaOH). L'ensemble des résultats présentés dans les figures 4A, 4B et 4C indiquent que la protéine IE41 est une protéine extrinsèque dont la liaison à la membrane interne de l'enveloppe chloroplastique implique des interactions électrostatiques. EXEMPLE 3 : PURIFICATION ET CARACTERISATION DE LA PROTEINE IE41 D'EPINARD De façon surprenante, la protéine IE41 purifiée à partir de chloroplastes d'épinard et la protéine recombinante d'Arabidopsis présentent une taille similaire en SDS-PAGE et Western blot, ce qui évoque la possibilité que IE41 puisse être adressée à la membrane interne de l'enveloppe sans nécessiter le clivage d'une séquence d'import N-terminale. Pour tester cette hypothèse, la protéine IE41 présente dans l'enveloppe des chloroplastes d'épinards a été purifiée afin de la séquencer et de comparer sa séquence à celle de l'ADNc correspondant. Immunopurification de la protéine IE41 d'épinard Des protéines d'enveloppe chloroplastique (1 mg) sont solubilisées dans 1 ml de tampon Tris/HCl 50 mM, NaCl 150 mM, CHAPS 6 mM et centrifugées (20 mn, 72 000 g, Beckman L2 65B, rotor SW28). Les protéines solubles sont incubées pendant 1 h à 4 C avec 33 l de sérum polyclonal dirigé contre la protéine recombinante IE41 d'Arabidopsis. On ajoute alors 50 Lg d'agarose-protéine A (BOEHRINGER) et le mélange est incubé 3 h à 4 C. Après 3 lavages successifs par centrifugation (EPPENDORF 5415D, 12 000 rpm, 20 mn, 4 C) et remise en suspension du culot dans 1 ml de tampon de solubilisation (20 mM MOPS, 150 mM NaCl, 6 mM CHAPS, pH 7,8), on ajoute un excès (50 g) de protéine recombinante (Histag)-IE41 dans 200 l) de tampon de solubilisation. Le mélange est incubé pendant 1 h à 4 C, et centrifugé pendant 20 mn à 12 000 rpm (EPPENDORF 5415D). Le surnageant est incubé pendant 1 h avec de la résine Ni-NTA (QIAGEN), précédemment équilibrée dans le tampon de solubilisation, afin d'éliminer la majeure partie de la protéine recombinante (His-tag)-IE41. Chaque fraction (20 l) est analysée par SDS-PAGE 12% (révélation au nitrate d'argent) et Western blot (en utilisant les anticorps polyclonaux de lapin anti-IE41 décrits à l'Exemple 1). Les résultats sont représentés dans la figure 5. Légende de la figure 5 : A : analyse par SDS-PAGE ; B : Western blot ; Mix = protéines d'enveloppe solubilisées ; C = protéines insolubles ; S = protéine solubles ; Ll, L2, L3 = fractions récupérées au cours des 3 lavages successifs ; El = fraction éliminée par incubation avec la résine Ni-NTA; E2 = protéine IE41 d'épinard purifiée (So) + (His-tag)-IE41. La fraction E2 comprenant la protéine IE41 naturelle d'épinard purifiée (So) demeure contaminée par la protéine (His-tag)-IE41 recombinante d'Arabidopsis. La différence de taille entre ces deux protéines correspond à l'extension polyhistidine (His-tag) présente à l'extrémité N-terminale de la protéine recombinante. EXEMPLE 4 : OBTENTION DE L'ADNc CODANT POUR LA PROTEINE IE41 D'EPINARD. Le séquençage partiel de la protéine IE41 d'épinard éluée à partir du gel d'électrophorèse a permis d'obtenir 9 séquences peptidiques différentes. Ces séquences ont été utilisées pour définir des amorces dégénérées qui ont permis d'isoler l'ADNc codant pour la protéine IE41. La séquence complète de cet ADNc (SEQ ID NO: 2), ainsi que la séquence polypeptidique déduite (SEQ ID N0:3) sont représentées sur la figure 6. Le codon ATG d'initiation de la traduction est indiqué en caractères gras, et le codon stop TAA est souligné. Les 9 séquences peptidiques obtenues par séquençage direct de la protéine IE41 d'épinard sont surlignées en gris. La correspondance entre les peptides obtenus avec la séquence déduite de l'ADNc de la protéine IE41 d'épinard, en particulier au niveau de la région Nterminale, ainsi que la présence d'un codon stop en aval de la méthionine initiatrice et dans le même cadre de lecture, démontrent que l'ADNc prédit est complet et que cette protéine ne subit pas de maturation post-traductionnelle lors de son adressage à la membrane interne de l'enveloppe du chloroplaste La protéine IE41 d'épinard présente 75,1% d'identité et 88,8% de similarité avec la protéine IE41 d'Arabidopsis. Cette forte similarité, et le fait qu'Arabidopsis contient seulement un gène ie41 par génome haploïde, permettent de conclure que ces protéines sont codées par des gènes d'Arabidopsis et d'épinard orthologues. Les protéines IE41 d'Arabidopsis et d'épinard ont été alignées avec des protéines homologues de bactérie, de levure, et d'animaux. Les résultats sont présentés sur la figure 7. Arabidopsis thaliana : IE41 ATH (SEQ ID NO . 1), Epinard : IE41 SOL (SEQ ID NO : 3) ; protéines homologues : Esherichia coli : QORECOLI (SEQ ID NO : 6), Saccharomyces cerevisiae : QORYEAST (SEQ ID NO : 7), Cavia Porcellus : QORCAVPO (SEQ ID NO : 8), souris : QORMOUSE (SEQ ID NO : 9). Les résidus conservés dans les 6 séquences peptidiques sont surlignés en gris foncé. Les résidus conservés dans la séquence de IE41 et dans au moins une autre séquence de protéine homologue sont surlignés en gris clair. Les similarités entre résidus se basent sur les groupes suivants : ASPTG, ILMV, KRH, NQ, DE, YWF et C. Les recherches d'homologies indiquent que la protéine IE41 appartient à la superfamille des deshydrogénases, et plus particulièrement au groupe des quinones oxydo-réductases de type -crystalline (JORNVALL et al., FEBS 3,240-244, 1993). De plus, la comparaison de séquence entre les protéines IE41 et les autres protéines de la même famille, révèle que les 50 premiers résidus dans la région N-terminale de ces protéines sont très conservés entre bactéries, végétaux, et animaux. Cette observation suggère que cette région N-terminale des protéines IE41 de végétaux ne serait pas impliquée dans l'adressage dans le chloroplaste, et serait conservée plus probablement du fait de la pression de sélection exercée au cours de l' évolution sur le domaine catalytique de la protéine. EXEMPLE 5 : ANALYSE DE L'ADRESSAGE PLASTIDIAL DE LA PROTEINE IE41 D'ARABIDOPSIS DANS DES CELLULES D'ARABIDOPSIS ET DE TABAC Pour définir le domaine essentiel à l'import de la protéine IE41, différentes constructions codant pour des formes tronquées de cette protéine fusionnées à la GFP sont exprimées dans les cellules d'Arabidopsis et de tabac. Construction des vecteurs d'expression : Le plasmide [35#-sGFP(S65T)] utilisé pour ces constructions, qui comprend la séquence codant pour la GFP sous contrôle du promoteur 35S, ainsi que le plasmide [35Q- TP-sGFP(S65T)], qui comprend la séquence codant pour le peptide d'adressage (TP) de la petite sous-unité de la ribulose-1,5-bisphosphate carboxylase, fusionnée à la séquence codant pour la GFP ont été décrits précédemment par CHIU et al. (Curr. Biol., 6, 325-330, 1996). La séquence codant pour la protéine IE41 d'Arabidopsis est amplifiée par PCR en utilisant les deux amorces suivantes : Xhol-N-ter CCTCTCGAGATGGCTGGAAAACTCATGCAC (SEQ ID NO : 12), et NcoI-C-ter CAACCCATGGATGGCTCGACAATGATCTTC (SEQ ID NO : 13), qui introduisent respectivement un site Xhol et un site Ncol (soulignés). Le produit de PCR est cloné à bouts francs dans le vecteur PBLUESCRIPT KS (STRATAGENE). Le fragment Xhol-Ncol clivé du plasmide ainsi obtenu est inséré dans le plasmide 35#-sGFP(S65T) préalablement digéré par Sall-Ncol afin de créer le vecteur 35Q-IE41-sGFP(S65T), comprenant la région codante de la protéine IE41 d'Arabidopsis fusionnée à la GFP. Un protocole similaire est utilisé pour les autres constructions : *La séquence codant pour la protéine IE41 d'Arabidopsis dépourvue des 31 premiers acides aminés est obtenue par amplification PCR en utilisant les deux amorces suivantes : Sall-N-ter CGGTTGTCGACATGAAGAGTAATGAGGTTTGCCTG (SEQ ID NO : 14) Ncol-C-ter CAACCCATGGATGGCTCGACAATGATCTTC (SEQ ID NO : 13). Le plasmide 35Q-A(l-31)IE41-sGFP(S65T) est obtenu par insertion de cette séquence dans le plasmide 35Q- sGFP(S65T). *La séquence codant pour la protéine IE41 d'Arabidopsis dépourvue des 59 premiers acides aminés est amplifiée par PCR en utilisant les deux amorces suivantes : SalI-N-ter GAATGGTCGACATGTTTCTGCCCCGCAAGTTC (SEQ ID NO : 15), et NcoI-C-ter CAACCCATGGATGGCTCGACAATGATCTTC (SEQ ID NO : 13). Le plasmide 35#-#(1-59)IE41-sGFP(S65T) est obtenu par insertion de cette séquence dans le plasmide 35Q- sGFP(S65T). *La séquence codant pour la protéine IE41 d'Arabidopsis dépourvue des 99 premiers acides aminés est amplifiée par PCR en utilisant les deux amorces suivantes : SalI-N-ter GGTTGTCGACATGCTAGGTGGAGGTGGACTTG (SEQ ID NO : 16) NcoI-C-ter CAACCCATGGATGGCTCGACAATGATCTTC (SEQ ID NO : 13). Le plasmide 35#-#(1-99)IE41-sGFP(S65T) est obtenu par insertion de cette séquence dans le plasmide 35QsGFP(S65T). *La séquence codant pour les acides aminés 6-100 de la protéine IE41 d'Arabidopsis est amplifiée par PCR en utilisant les deux amorces suivantes : XhoI-N-ter CCTCTCGAGATGGCTGGAAAAACTCATGCAC (SEQ ID NO : 17) NcoI-C-ter ACCCATGGCTAGATGGCTAAGAACCGCTAC (SEQ ID NO : 18). L'amorce SEQ ID NO : 17 comprend un nucléotide supplémentaire par rapport à l'amorce SEQ ID NO : 15, ce qui crée un décalage de la phase de lecture dans le produit d'amplification, dont la traduction débute au niveau du codon ATG correspondant à la méthionine en position 6 de la protéine IE41. Le plasmide 35#-(6-100)IE41-sGFP(S65T) est obtenu par insertion de cette séquence dans le plasmide 35QsGFP(S65T). *La séquence codant pour les acides aminés 60-100 de la protéine IE41 d'Arabidopsis est amplifiée par PCR en utilisant les deux amorces suivantes : SalI-N-ter GAATGGTCGACATGTTTCTGCCCCGCAAGTTC (SEQ ID NO : 15) Ncol-C-ter ACCCATGGCTAGATGGCTAAGAACCGCTAC (SEQ ID NO : 18). Le plasmide 35Q- (60-100) IE41-sGFP (S65T) est obtenu par insertion de cette séquence dans le plasmide 35Q-sGFP(S65T). Ces différentes constructions sont représentées sur la figure 8. Légende de la figure 8 : IE41=plasmide 35Q-IE41-sGFP(S65T) A(1-31)IE41= plasmide 35#-#(1-31)IE41-sGFP(S65T) A(1-59)IE41= plasmide 35#-#(1-59)IE41-sGFP(S65T) A(1-99)IE41= plasmide 35#-#(1-99)IE41-sGFP(S65T) (6-100)IE41= plasmide 35Q-(6-100)IE41-sGFP(S65T) (60-100)IE41= plasmide 35Q-(60-100)IE41-sGFP(S65T) Bombardement de cellules d'Arabidopsis et de tabac Les cellules d'Arabidopsis sont cultivées à la lumière pendant 3 jours dans du milieu B5 de GAMBORG (SIGMA, pH 5,8) complémenté avec 1,5% sucrose et 1 M ANA (acide naphtalène acétique). 15 ml de suspension cellulaire (correspondant à environ 0,5 g) sont transférés dans des boîtes de Pétri contenant le même milieu de croissance additionné de 0,8% bacto-agar, et incubés pendant 18-36 h à la lumière. Les cellules BY2 de tabac sont cultivées pendant 5 ours à 27 C dans du milieu de MURASHIGE et SKOOG (milieu MS, DUCHEFA, pH 5,8) complémenté avec 3% sucrose, 0,2% KH2PO4, 0,2% myoinositol, 1 M 2.4D (acide 2.4dichlorophénoxyacétique) et 3 M thiamine. 2,5 ml de suspension cellulaire (correspondant à environ 0,3 g) sont transférés dans des boîtes de Pétri contenant le même milieu de croissance additionné de 1% bacto agar et sont placés à 27 C pendant 18-24 h. Les plasmides comprenant les constructions à tester utilisés pour le bombardement tissulaire sont préparés en utilisant le QIAfilter Plasmid Midi Kit (Qiagen, Allemagne). Le plasmide [35Q-sGFP(S65T)] (GFP) et le plasmide [35#-TP-sGFP(S65T)] (TP-GFP) sont respectivement utilisés à titre de témoin négatif et de témoin positif. Les plasmides (1 g) sont introduits dans les cellules en utilisant un canon à particules pneumatique (PDS- 1000/He, BIORAD). Les conditions de bombardement sont les suivantes : pression d'hélium de 1 350 psi ; disques de rupture de 1 100 psi (BIORAD) ; distance de cible de 10 cm ; des microporteurs en or de 1 m (BIORAD) sont utilisés. Après le bombardement, les cellules sont incubées sur ces mêmes boîtes de Petri pendant 18-36 h (à la lumière pour les cellules d'Arabidopsis), puis transférées sur des lames en verre avant la microscopie de fluorescence. Microscopie de fluorescence La localisation de la GFP et des peptides de fusion à la GFP est analysée dans les cellules transformées par microscopie de fluorescence en utilisant un microscope à fluorescence ZEISS AXIOPLAN 2, et une caméra CCD digitale (HAMAMATSU). Les jeux de filtres utilisés sont : jeu de filtre Zeiss 13,488013-0000 (excitateur BP 470/20, diviseur de faisceau FT 493, émetteur BP 505-530), et jeu de filtre Zeiss 15,488015-0000 (excitateur BP 546/12, diviseur de faisceau FT 580, émetteur LP 590) pour la GFP et l'autofluorescence des chlorophylles, respectivement. Dans ces conditions, la présence de la chlorophylle (spécifiquement localisée au niveau des chloroplastes) et la localisation de la GFP dans la cellule sont visualisées par une fluorescence intense. Dans les cellules d'Arabidopsis transformées avec les constructions GFP, A(1-99)IE41, et (60-100)IE41, la fluorescence de la GFP apparaît diffuse, et localisée au niveau du cytosol et du noyau ; co-localisation avec la chlorophylle n'est observée. Dans les cellules d'Arabidopsis, transformées avec les constructions IE41, A(1-31)IE41, A(1-59)IE41, (6- 100) IE41, ainsi qu'avec le témoin positif de localisation TPGFP, on observe au contraire une co-localisation, au niveau des chloroplastes, entre la fluorescence de la GFP et l'autofluorescence de la chlorophylle. Les résultats sont similaires dans les cellules non chlorophylliennes BY2 de tabac :les marquages fluorescents observés avec les constructions IE41, #(1- 59)IE41 et (6-100)IE41, et avec le témoin positif de localisation TP-GFP, correspondent à une localisation plastidiale ; en revanche, les marquages fluorescents observés avec les constructions GFP, A(1-99)IE41, et (60- 100) IE41 correspondent à une localisation cytosolique et nucléaire. Ces expériences montrent que l'adressage est également efficace dans les plastes non chlorophylliens. L'ensemble des résultats ci-dessus montre que : - la protéine IE41 complète fusionnée à la GFP est adressée dans le chloroplaste ; - les 59 résidus localisés en N-terminal ne sont pas essentiels à l'import ; - les 99 résidus localisés en N-terminal contiennent une région essentielle à l'import ; - une séquence de 94 résidus, correspondant aux acides aminés N-terminaux 6-100 est suffisante pour catalyser l'import ; les 223 résidus (101-323) C-terminaux ne sont donc pas essentiels à l'import. La séquence interne de 40 acides aminés, allant des résidus 60-100, correspond au domaine essentiel à l'import. Toutefois, ce domaine qui doit être présent pour diriger la protéine vers les plastes, n'est pas suffisant pour un bon adressage. REVENDICATIONS 1) Polypeptide d'adressage intraplastidial caractérisé en ce qu'il comprend : - un domaine A constitué par un polypeptide présentant au moins 60% d'identité, ou au moins 65% de similarité avec l'un des polypeptides SEQ ID NO: 4 ou SEQ ID NO: 5 ; et au moins un domaine choisi parmi : - un domaine B situé à l'extrémité N-terminale du domaine A, et constitué par un fragment de l'un des polypeptides SEQ ID NO: 1 ou SEQ ID NO: 3 comprenant au moins les acides aminés 49 à 59 dudit polypeptide, ou bien par un polypeptide présentant au moins 60% d'identité, ou au moins 65% de similarité, avec ledit fragment ; - un domaine C situé à l'extrémité C-terminale du domaine A, et constitué par un fragment de l'un des polypeptides SEQ ID NO: 1 ou SEQ ID NO: 3 comprenant au moins les acides aminés 101 à 111 dudit polypeptide, ou bien par un polypeptide présentant au moins 60% d'identité, ou au moins 65% de similarité avec ledit fragment. 2) Polypeptide selon la revendication 1, caractérisé en ce que le domaine B est constitué par un fragment comprenant au moins les acides aminés 39 à 59 des polypeptides SEQ ID NO :1 ou SEQ ID NO :3, ou bien par un polypeptide présentant au moins 60% d'identité, ou au moins 65% de similarité, avec ledit fragment. 3) Polypeptide selon l'une quelconque des revendications 1 ou 2, caractérisé en ce que le domaine C est constitué par un fragment comprenant au moins les acides aminés 101 à 121 des polypeptides SEQ ID NO :1 ou SEQ ID NO :3, ou bien par un polypeptide présentant au moins 60% d'identité, ou au moins 65% de similarité avec ledit fragment. 4) Polypeptide chimérique, comprenant un polypeptide d'adressage intraplastidial selon l'une quelconque des revendications 1 à 3 fusionné avec une protéine hétérologue. 5) Polypeptide chimérique selon la revendication 4, caractérisé en ce que le polypeptide d'adressage intraplastidial est placé à l'extrémité N-terminale de la protéine hétérologue. 6) Utilisation d'un polypeptide d'adressage intraplastidial selon la revendication 1 pour l'importation d'une protéine d'intérêt dans des plastes. 7) Utilisation selon la revendication 6, caractérisée en ce que ledit polypeptide d'adressage intraplastidial est utilisé pour l'importation de ladite protéine d'intérêt dans des chloroplastes. 8) Procédé pour importer une protéine d'intérêt dans des plastes caractérisé en ce qu'il comprend l'expression, dans une cellule végétale contenant lesdits plastes, d'un polypeptide chimérique résultant de la fusion d'un polypeptide d'adressage intraplastidial selon la revendication 1 avec ladite protéine d'intérêt. 9) Polynucléotide codant pour un polypeptide selon une quelconque des revendications 1 à 5. 10) Cassette d'expression comprenant un polynucléotide selon la revendication 9 placé sous contrôle de séquences de régulation de la transcription. 11) Vecteur recombinant résultant de l'insertion d'un polynucléotide selon la revendication 9 ou d'une cassette d'expression selon la revendication 10, dans un vecteur-hôte. 12) Plante transgénique transformée par un polynucléotide selon la revendication 9 ou d'une cassette d'expression selon la revendication 10.