Brevet FR2836924A1 — publié le 20030912

La présente invention se rapporte à un procédé d'obtention de lignées cellulaires aviaires, comprenant un sevrage progressif ou total des facteurs de croissance, du sérum et/ou du tapis nourricier de sorte que les lignées établies sont des cellules adhérentes ou nonadhérentes capables de proliférer indéfiniment dans un milieu de culture de base. L'invention porte aussi sur les cellules dérivant de telles lignées qui sont particulièrement utiles pour la production de substances d'intérêt. Les cellules souches sont des cellules identifiées in vitro à partir d'un embryon, d'une partie d'un embryon ou même d'un tissu adulte. Ces cellules isolées présentent des caractéristiques morphologiques, immuno-cytochimiques particulières. On peut également distinguer la notion de cellules souches embryonnaires, cellules souches qui ont la particularité d'être obtenues à partir de la mise en culture de parties ou de l'ensemble d'un embryon très précoce (stade blastula). Ces cellules souches embryonnaires ou cellules ES ont en plus des cellules souches la capacité unique de contribuer à la morphogenèse d'un embryon et de participer à la colonisation germinale quand elles sont réimplantées de quelque manière que cela soit dans un embryon receveur. A l'inverse des cellules primaires déjà différenciées, les cellules souches ne présentent pas un état de différenciation morphologique caractéristique facilement identifiable (fibroblaste, adipocyte, macrophage, etc...), mais sont plutôt caractérisées par un état de non différenciation. Cet état se traduit par différents comportements comme une prolifération rapide in vitro, une morphologie caractéristique, la présence de différents marqueurs, des besoins en facteurs de croissance variables et une aptitude à répondre à des stimuli d'induction de différenciation particuliers. Elles ne sont pas sensibles à la sénescence réplicative, période critique pour un grand nombre de cellules primaires différenciées, dont les fibroblastes par exemple. Toutefois, jusqu'à présent, pour le maintient in vitro des cellules souches aviaires pendant des périodes de temps importantes, il faut respecter des conditions de culture et d'entretiens spécifiques telles que décrites dans Pain et al., 1996 ; US 6,114, 168 et EP 787 180. La mise en culture in vitro d'une cellule primaire dans des conditions satisfaisantes de milieu et de facteurs de croissance lui permet de proliférer seulement pendant un certain nombre de passage. Cette cellule peut être obtenue directement d'un tissu dissocié ou d'une partie de ce tissu. Ce nombre de passage est néanmoins très dépendant de l'espèce animale considérée, de l'origine du tissu, de l'âge de l'organisme donneur, etc... Dans la plupart des cas, la prolifération cellulaire observée in vitro ralentit progressivement puis les cellules cessent de proliférer. Cet arrêt correspond souvent à une sénescence phénotypique, connue sous le terme de limite de Hayflick. Cet arrêt serait le résultat de l'action d'une véritable horloge moléculaire dont un des acteurs clefs serait la longueur des télomères. Les télomères sont des séquences répétées situées à l'extrémité des chromosomes. Le raccourcissement de ces structures nucléotidiques répétitives est la conséquence de la réplication du DNA sur un mode semi conservatif. En l'absence de l'enzyme télomérase, en charge d'ajouter les séquences répétées à l'extrémité des chromosomes, un point de non-retour est atteint quant à la taille des télomères, point au-delà duquel est déclenché un mécanisme moléculaire encore inconnu d'activation de gènes impliqués dans le contrôle du cycle cellulaire. Les cellules seraient alors bloquées en phase G 1 dans leurs divisions et cesseraient de proliférer. De nombreux acteurs semblent intervenir dans ce contrôle négatif du cycle cellulaire comme les différentes cyclines, les kinases spécifiques, les protéines RB, P53, les facteurs de transcription spécifiques comme E2F et bien d'autres (mdm2, BTG, p21,...). A l'inverse, l'enzyme télomérase peut donc être vue comme un acteur central de l'immortalité cellulaire, car elle maintient la longueur des télomères et donc rend insensible la cellule à cette perte engendrée par les divisions successives. Dans un organisme en développement et au cours de la vie de cet organisme, seuls quelques types cellulaires, dont certains lymphocytes présentent une expression permanente de la télomérase. Cette activité est surtout présente dans le lignage germinal. Cette propriété d'expression, de maintient d'expression ou de'réveil'd'expression de l'activité télomérase est également souvent associée au caractère immortel d'une cellule maintenue in vitro. Ainsi, de nombreuses cellules cancéreuses sont détectées positives pour l'activité télomérase. Cette activité télomérase est, dans tous les cas, un excellent marqueur du lignage germinal et de la capacité d'une cellule à devenir immortelle. Deux critères sont donc utilisés : l'activité de la télomérase et la taille des télomères. Dans une perspective d'établissement et de façon très schématique, d'après la littérature et les résultats déjà disponibles dans de nombreux laboratoires, deux grandes familles de lignées peuvent être obtenues : un établissement spontané et un établissement provoqué, que celui-ci soit obtenu par virus, rétrovirus ou par un des moyens mentionnés précédemment. Au niveau des mammifères, l'établissement des cellules de rongeurs (souris, rat,...) est reconnu comme assez facile de façon spontanée, par contre, la situation est toute autre pour les cellules humaines, quelque soit leur origine tissulaire (Smith and Pereira-Smith, 1996). Ainsi, lorsque l'on souhaite dériver des lignées cellulaires des cellules souches aviaires mentionnées ci-dessus en vue de produire en masse des substances d'intérêt in vitro, le problème est de pouvoir maintenir des cellules en culture dans un milieu économique tout en évitant les écueils tels que la différenciation et la sénescence cellulaire. Au niveau aviaire, il est en général admis que l'établissement de cellules primaires est un événement rare, voire quasi inexistant. La seule exception notable publiée semble être la lignée DF-1 qui résulte de l'immortalisation décrite comme spontanée de fibroblastes de poulet (Foster et al., 1991 ; brevet US 5,672, 485, ? ATCC CRL 12203). Au niveau de cette lignée, des articles récents mentionnent les premiers éléments de dérégulation observée (Kim et al., 2001a ; Kim et al., 2001b). La première étape conduit la cellule en prolifération vers la limite de Hayflick, qui selon les types cellulaires se situe entre 10 à 50 passages. Un premier événement mutationnel spontané a alors lieu qui permet à la cellule de franchir ce premier blocage, événement qui affecte souvent les gènes p53, pRb,.... Suite à cette deuxième étape de prolifération, un deuxième blocage intervient et est en général levé par de nouvelles mutations dans d'autres gènes et par l'activation de la télomérase, souvent observée. Au niveau aviaire, il est en général admis que l'établissement de cellules primaires immortelles est un événement quasi inexistant. C'est pourquoi un nombre important de lignées ont été obtenues par la mise en culture de cellules tumorales, souvent directement prélevées à partir d'une biopsie de la tumeur. Cette obtention in vitro est en fait le résultat de l'altération in vivo de certains gènes, responsables de l'apparition de la tumeur. Un exemple est fourni par la lignée fibroblastique SB-CEV-1, isolée à partir de la mise en culture d'une tumeur viscérale d'un animal. (ATCC ? CRL 10497, brevet US NO 5,846, 527). Cette approche est grandement facilitée par l'existence d'un très grand nombre de virus et rétrovirus aviaires, identifiés, isolés et souvent caractérisés au niveau moléculaire. Souvent oncogéniques par leur action directe ou indirecte (activation d'un gène endogène transformant lors de leur intégration, expression de la (ou les) protéine oncogénique endogène au virus), ces virus provoquent des tumeurs, des lésions et l'obtention de lignées cellulaires dans différents lignages différenciés est possible à partir de la mise en culture des organes infectés des animaux. L'utilisation in vitro de ces virus et rétrovirus, isolés in vivo, a été développée de façon complémentaire. On peut ainsi citer de façon non exhaustive : - les lignées lymphoblastoides DT40 et DT95, obtenues en présence du virus de la leucose aviaire (ALV) et dans lesquelles le locus myc est activé (Baba et al., 1985, ATCC, N CRL 2111, CRL NO 2112), - la lignée lymphoblastoïde de dinde MDTC-RP19, établie avec le virus de la maladie de Marek (US NO 4, 388,298, ATCC NO 8135), - la lignée lymphoblastoïde ConA-Cl, établie avec le virus REV (Reticuloendothelial virus, ATCC NO 12135, US NO 5, 691,200) - la lignée myélomonocytaire BM2 établie avec le virus MH2 (Liu et al., 1977, brevet US N'5, 388,680), - et toute une série de lignées hématopoiétiques obtenues avec différents virus, - la lignée érythroblastique HD4 (6C2), obtenue avec le virus AEV - la lignée monocytaire HD11 (Beug et al., 1979), obtenue avec le virus MC29 - la lignée granulocytaire HD13 (Golay et al., 1988), obtenue avec le virus E26 - la lignée hématopoiétique mixte HD57 (Metz and Graf, 1991) également obtenue avec le virus E26 Cependant, le problème dans ces approches est l'obtention de cellules qui produisent et portent le génome activé des virus et rétrovirus utilisés pour la transformation. Ces activations sont des freins à leur utilisation industrielle comme support de réplication à des virus d'intérêt ou pour la production de protéines d'intérêt dans des conditions optimales de sécurité. Une autre approche de sur-expression d'oncogènes, de gènes immortalisants (gène E1A de l'adénovirus, 'large T'du polyome SV40, etc...) ou de fragments de gènes a également permis d'obtenir des lignées à partir de cellules primaires déjà différenciées. Ces éléments peuvent être introduits dans les cellules par simple transfection de vecteur permettant l'expression de la partie immortalisante, mais également introduits via les virus ou rétrovirus modifiés génétiquement pour exprimer ces éléments immortalisants. L'origine des immortalisants peut être aviaire ou non, virale ou non. Le tropisme pour les cellules aviaires pouvant être d'ailleurs lié au virus originel ou également modifié. A titre d'exemple, la lignée TDF-2A de fibroblastes de canard est ainsi obtenue par introduction d'un premier gène immortalisant puis d'un gène anti-apoptotique (Guilhot et al., 1993, brevet US 6,255, 108). D'autres méthodes ont été développées, comme la sur-expression de p53 (Foster et al., brevet US NO 5, 830,723). En outre, l'action de carcinogènes chimiques directement sur l'animal selon différents modes d'administration a permis entre autres l'obtention des lignées QT6 et QT35, de fibroblastes de caille (Moscovici et al., 1977, ATCC ? CRL 1708), - de la lignée d'hépatocyte de poulet LMH (Kawaguchi et al., 1989, ATTC ? CRL 2117), - de la lignée CHCC-OU2 de fibroblastes de poulet (ATCC, ? CRL 12302, Brevet US NO 5, 989,805). Par événement d'immortalisation, on entend différentes actions comme : - l'action de stress oxydatifs, thermiques, chimiques capables d'induire des modifications de la physiologie des cellules et/ou des mutations, - l'action des produits de gènes spécifiques dans la physiologie des cellules comme certains gènes immortalisants (oncogènes, proto-oncogènes, gènes du cycle cellulaire, gènes anti-apoptiques, etc...), - la destruction ciblée par recombinaison ou inactivation fonctionnelle d'anti- oncogènes, de gènes apoptiques, de gènes suppresseurs de tumeurs, de gènes anti- prolifératifs menant à une dérégulation fonctionnelle du cycle cellulaire ou de la physiologie de la cellule, - le contrôle de gènes de prolifération par leur blocage fonctionnel, etc..., l'action de rayonnements (UV, gamma, X, etc...), - l'action de mutagènes chimiques (substances endommageant l'ADN, substances analogues de facteurs de croissance, etc...), Faction conjuguée de ces différentes actions prises séparément. Dans le cadre de l'invention, on a trouvé de manière tout à fait surprenante que le sevrage des facteurs de croissance, du sérum et/ou du tapis nourricier conduit à l'isolement de populations cellulaires souches pouvant croître indéfiniment dans des milieux de culture de base. En outre, hormis les cellules d'origine et de phénotype hématopoiétique qui sont pour la plupart des cellules non adhérentes, la majorité des cellules, obtenues selon les techniques de l'art évoquées ci-dessus (fibroblastes, hépatocytes, etc...), présentent un phénotype adhérent. Or, l'utilisation industrielle des cellules, comme support de réplication virale, privilégie les cellules non adhérentes. Ce phénotype est intéressant tant pour des raisons de facilité de manipulation qui évite l'usage d'enzyme protéolytique de dissociation que pour les densités importantes que la plupart des cellules non-adhérentes peuvent atteindre in vitro. La présente invention apporte des lignées qui peuvent être non-adhérentes dans le cas où l'on procède à un sevrage du tapis nourricier et donc qui sont parfaitement adaptées à une utilisation industrielle pour la production de substances d'intérêt dans des bioréacteurs. Description Ainsi, la présente invention se rapporte à un procédé d'obtention de lignées cellulaires aviaires, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes : a) mise en culture de cellules aviaires dans un milieu comportant l'ensemble des facteurs permettant leur croissance et un tapis nourricier inactivé. b) passage en modifiant le milieu de culture de sorte à obtenir un sevrage progressif ou total desdits facteurs, du sérum et/ou du tapis nourricier, c) établissement de lignées cellulaires adhérentes ou non-adhérentes capables de proliférer dans un milieu de base en l'absence de facteurs de croissance exogènes, de sérum et/ou du tapis nourricier inactivé. Dans le cadre de l'invention, on entend par établissement d'une lignée , le maintient de cellules en culture in vitro sur une période considérable de temps. Avantageusement, les cellules issues des lignées obtenues à l'étape c) sont capables de proliférer pendant au moins 50 jours, 100 jours, 150 jours, 300 jours ou de préférence au moins 600 jours. 600 jours ne constitue pas une limite temporelle car les lignées cellulaires obtenues sont toujours vivantes après des périodes de temps bien plus longues. Dès lors, ces lignées sont considérées comme pouvant croître indéfiniment en milieu de culture de base dépourvu de facteurs de croissance exogènes, de sérum et/ou du tapis nourricier inactivé. Par lignée , on entend toute population de cellules capables de proliférer indéfiniment en culture in vitro en gardant peu ou prou les mêmes caractéristiques morphologiques et phénotypiques. Les cellules issues des lignées selon l'invention peuvent être des cellules souches aviaires, notamment des cellules souches embryonnaires aviaires. Par cellule souche , on entend toute cellule présentant la capacité à se diviser in vitro en culture pendant des périodes de temps infinis et capables de donner différents types cellulaires spécialisés et par cellule souche embryonnaire (ES) , on entend une cellule pluripotente non différenciée dérivant d'un embryon et qui a les potentialités de donner une très large variété de cellules spécialisées. Ces cellules souches peuvent servir pour dériver des lignées de cellules différenciées. En effet, ces cellules peuvent être cellule pluripotente, c'est à dire des cellules qui ont la capacité à se différencier en cellules dans les trois feuillets embryonnaires ou totipotente, c'est à dire des cellules présentant une capacité illimitée de prolifération, état limité à la cellule oeuf. Ces cellules peuvent également être des cellules précurseurs, qui correspondent aux cellules d'un tissu adulte ou embryonnaire partiellement différenciées par opposition à une cellule souche et qui est capable de se diviser et de donner des cellules plus différenciées. Par cellule différenciée , on entend toute cellule d'un tissu adulte ou embryonnaire spécialisée, présentant des marqueurs spécifiques ou remplissant des fonctions physiologiques spécifiques. Les cellules issues des lignées évoquées ci-dessus peuvent également être des cellules germinales souches (EG). Ces cellules trouvées dans une partie spécifique de l'embryon appelées les crêtes génitales, devenant les gonades dans l'organisme adulte. Ces cellules se développent normalement en gamètes matures. Bien entendu, le procédé mentionné ci-dessus permet d'obtenir des clones cellulaires issus des cellules provenant des lignées établies. Ces clones sont des cellules génétiquement identiques à la cellule de laquelle elles dérivent par division. Dans un mode de réalisation particulier, l'invention porte sur un procédé tel que défini précédemment, dans lequel les lignées établies sont des cellules souches adhérentes qui prolifèrent en l'absence du tapis nourricier inactivé. Dans un autre mode de réalisation, l'invention porte sur un procédé tel que défini précédemment dans lequel les lignées établies sont des cellules souches non adhérentes qui prolifèrent en suspension dans un milieu dépourvu de facteurs de croissance exogènes. En outre, les lignées établies peuvent être des cellules qui prolifèrent dans un milieu appauvri en sérum, en particulier dans un milieu dépourvu de sérum. De telles cellules présentent au moins une des caractéristiques suivantes : un rapport nucléocytoplasmique important, une activité alcaline phosphatase endogène, une activité télomérase endogène, une réactivité avec des anticorps spécifiques sélectionnés parmi le groupe des anticorps SSEA-1 (TEC01), SSEA-3, et EMA-1. Dans un aspect supplémentaire, l'invention porte sur un procédé d'obtention de lignées aviaires mentionné ci-dessus dans le quel les cellules issues des lignées obtenues à l'étape c) sont modifiées pour permettre une meilleure utilisation in vitro comme l'extension de la durée de vie ou des densités de croissance plus importantes ou encore des besoins en nutriments moins importants. Avantageusement, les cellules issues des lignées établies sont modifiées pour produire une substance d'intérêt, notamment un polypeptide d'intérêt, un anticorps ou un virus atténué. Lesdites cellules peuvent être modifiées avec toute technique à la portée de l'homme du métier, notamment la recombinaison homologue, dirigée et/ou conditionnelle (système Cre-Lox ou FLP-FRT), par transformation par tout vecteur, plasmide, notamment à l'aide de rétrovirus. Le milieu utilisé à l'étape a) peut comprendre au moins un facteur sélectionné parmi les cytokines, notamment LIF, IL-11, IL-6, IL-6R, CNTF, Oncostatine et d'autres facteurs tels que le SCF, l'IGF-1 et le bFGF. En outre, le tapis nourricier inactivé utilisé à l'étape a) se compose de préférence de cellules de fibroblastes, dont des fibroblastes de souris établies en lignée, notamment de cellules STO transformées ou non (Pain et al, 1996). Dans ce procédé, les cellules utilisées à l'étape a) sont des cellules obtenues par suspension de cellules provenant de disques blastodermiques d'oeufs fécondés dans un milieu de culture comprenant au moins une cytokine, b-FGF, et SCF, lesdites cellules étant ensemencées sur un tapis de cellules nourricières, incubées, puis prélevées. L'étape b) consiste en un sevrage progressif de chaque facteur de croissance ajouté dans le milieu de l'étape a), notamment une cytokine, b-FGF, et SCF, comprenant un passage dans un milieu neuf dépourvu d'au moins un desdits facteurs et à répéter différents passages successifs jusqu'à ce que le milieu soit dépourvu de l'ensemble desdits facteurs. Par sevrage progressif, on entend une suppression facteur par facteur dans le milieu de culture. Alternativement, on peut procéder à un sevrage drastique ou total, c'est à dire l'enlèvement de l'ensemble desdits facteurs en une seule fois. L'étape b) peut également comprendre le sevrage du sérum. A ce titre, le sevrage peut être progressif en diminuant la concentration en sérum lors de chaque passage, par exemple en passant de 10 % à 7,5% puis 3,75% et 2% pour tendre vers 0 %. Alternativement, on peut procéder à un sevrage drastique. L'étape b) peut également comprendre le sevrage du tapis nourricier. Le sevrage du tapis nourricier peut également être progressif en diminuant le nombre de cellules nourricières inactivées lors de chaque passage. Alternativement, on peut procéder à un sevrage drastique. Bien entendu, l'ordre des sevrages peut varier. Par exemple, on peut commencer par le sevrage des facteurs de croissance et poursuivre avec le sevrage du tapis nourricier. Ainsi, dans un autre aspect, l'invention se rapporte aux lignées cellulaires établies et aux cellules issues desdites lignées susceptibles d'être obtenues à partir du procédé décrit cidessus, lesdites cellules étant capables de proliférer pendant au moins 50 jours, 100 jours, 150 jours, 300 jours, ou de préférence au moins 600 jours dans un milieu dépourvu de facteur de croissance exogène, de sérum et/ou de tapis nourricier. Ces lignées cellulaires et les cellules qui en dérivent sont capables de proliférer pendant au moins 50 jours, 100 jours, 150 jours, 300 jours, ou de préférence au moins 600 jours dans un milieu de base, notamment dans un milieu tel que DMEM, GMEM, HamF12 ou McCoy supplémenté de différents additifs couramment utilisés par l'homme du métier. Parmi les additifs, on peut citer les acides aminés non essentiels, les vitamines et le pyruvate de sodium. L'invention porte également sur lignées cellulaires et les cellules issues de telles lignées décrites ci-dessus, caractérisées en ce qu'elles sont des cellules souches aviaires ou des cellules souches embryonnaires aviaires. Ces cellules souches peuvent être adhérentes tout en proliférant en l'absence du tapis nourricier inactivé. Alternativement, ces cellules souches sont non adhérentes et prolifèrent en suspension dans un milieu de base évoqué ci-dessus. Ces cellules se caractérisent également en ce qu'elles présentent au moins une des caractéristiques suivantes : un rapport nucléocytoplasmique important, une activité alcaline phosphatase endogène, une activité télomérase endogène, une réactivité avec des anticorps spécifiques sélectionnés parmi le groupe des anticorps SSEA-1 (TEC01), SSEA-3, et EMA-1. Avantageusement, ces cellules sont modifiées génétiquement de sorte à produire une substance d'intérêt, notamment un polypeptide d'intérêt, un anticorps ou un virus atténué. Lesdites cellules peuvent par exemple supporter la réplication de virus vivants ou atténués, en particulier les virus sélectionnés dans le groupe des hepadnavirus, des herpesvirus, des orthomyxovirus, des paramyxovirus, des picornavirus, des poxvirus, des reovirus et des rétrovirus. De préférence, les virus répliqués sur ces cellules appartiennent à la famille des orthomyxovirus, en particulier le virus de la grippe ou à la famille des paramyxovirus, en particulier les virus de la rougeole, des oreillons et de la rubéole. Ainsi, l'invention portent sur les lignées cellulaires décrites ci-dessus, les cellules dérivant desdites lignées et également des lignées cellulaires obtenues à partir des cellules qui ont été modifiées génétiquement. De préférence, l'invention vise les lignées cellulaires issues de l'étape c) du procédé décrit plus haut caractérisées en ce qu'elles sont des cellules souches aviaires génétiquement modifiées capables de croître indéfiniment en milieu de base dépourvu de facteurs de croissance exogènes, appauvri en sérum ou dépourvu de sérum et/ou de tapis nourricier. L'invention vise également une culture cellulaire comprenant des cellules issues des lignées cellulaires décrites ci-dessus, notamment des cellules souches aviaires ou des cellules souches embryonnaires aviaires et un milieu de base dépourvu de facteurs de croissance exogènes, appauvri en sérum ou dépourvu de sérum et/ou du tapis nourricier inactivé. Dans un aspect supplémentaire, l'invention concerne l'utilisation des lignées cellulaires et des cellules décrites précédemment pour la production de substances d'intérêt en particulier des protéines d'intérêt thérapeutiques, pour la réplication de virus vivants ou atténués, en particulier les virus pris dans le groupe des hepadnavirus, des herpesvirus, des orthomyxovirus, des paramyxovirus, des picomavirus, des poxvirus, des reovirus et des rétrovirus. De préférence, on utilise les lignées cellulaires et les cellules décrites précédemment pour la production de virus appartenant à la famille des orthomyxovirus, en particulier le virus de la grippe et pour la production de virus appartenant à la famille des paramyxovirus, en particulier les virus de la rougeole, des oreillons et de la rubéole. Dans ces lignées et cellules utilisées pour supporter la réplication de virus vivants ou atténués, on peut introduire le ou les composants nécessaires à l'accomplissement du cycle viral complet du virus de sorte à obtenir par exemple la sur-expression du récepteur au virus à la surface de la cellule. Exemple 1 : origine variable du matériel vivant utilisé L'établissement de lignées cellulaires est souvent très lié à la nature génétique du matériel cellulaire. Ainsi, dans l'exemple murin, proportionnellement peu de fonds génétiques sont permissifs à l'obtention de cellules souches embryonnaires ES et implique souvent une notion d'animaux consanguins. Au niveau aviaire, il est difficile d'obtenir des animaux consanguins pour des raisons historiques et d'origine de sélection des souches commerciales et d'intérêt, qui évitent justement la consanguinité. Les oeufs sont la source initiale des cellules mises en culture dans cette invention. Les oeufs sont utilisés de préférence non incubés, mais quelques heures d'incubations peuvent être nécessaires pour amener les premiers stades de développement de l'embryon. Les cellules obtenues sont issues de différentes souches de poulet. Parmi les souches utilisées, on peut citer la souche S86N, souche commerciale destinée à la production de poulet Label, les CNR, souche destinée à la production de poulet Label, les Marens, souche locale bien caractérisée génétiquement et phénotypiqement, les White Leghorn, souche plus destinée à la production d'oeufs de consommation et souche de référence des laboratoires de recherche, etc.... Dans cette dernière souche, différentes origines ont été testées dont certains oeufs (appelés Valo) issus de la souche White Leghorn de chez Lohmann (Allemagne) considérés comme des oeufs'SPF' (SPF Specific Pathogen Free) maintenues dans des conditions très particulières de sécurité sanitaire. De nombreux isolats de cellules ont été obtenus à partir de différentes souches, suggérant le caractère général de la méthode. Exemple 2 : Obtention et établissement des cellules adhérentes Les oeufs sont ouverts, le jaune est séparé du blanc lors de l'ouverture. Les embryons sont prélevés sur le jaune soit directement à l'aide d'une pipette Pasteur, soit à l'aide d'un petit filtre de papier absorbant (Papier Whatmann 3M), préalablement découpé sous forme d'un anneau perforé à l'aide d'une perforeuse. Le diamètre de la perforation étant d'environ 5 mm. Ces petits anneaux sont stérilisés à la chaleur sèche pendant environ 30 min au four. Ce petit anneau de papier est déposé sur la surface du jaune et centré au niveau de l'embryon qui est ainsi entouré par l'anneau de papier. Ce dernier est alors découpé à l'aide de petits ciseaux et l'ensemble prélevé est placé dans une boite de Petri, remplie de PBS ou d'un liquide physiologique. L'embryon ainsi entraîné par l'anneau est nettoyé de l'excès de jaune dans le milieu et le disque embryonnaire ainsi débarrassé de l'excès du vitellus est prélevé avec une pipette Pasteur. Dans les deux cas, les embryons sont mis dans un tube contenant du milieu physiologique (PBS, TG, milieu,...). Les embryons sont alors dissociés mécaniquement et ensemencés sur un'feeder'dans du milieu de culture défini. Parmi les conditions préférentielles utilisées pour les mises en culture, on privilégie le milieu de culture composé du milieu MacCoy comme milieu de base supplémenté avec du sérum de veau foetal à une concentration initiale de 12 à 8 %, avec des acides aminés non essentiels à 1 %, avec un mélange de vitamines d'origine commerciale à 1 %, avec du pyruvate de sodium à une concentration finale de ImM, avec du beta-mercaptoéthanol à une concentration finale de 0,2 mM, de la glutamine à une concentration finale de 2,9 mM, avec un mélange initial d'antibiotiques contenant de la gentamycine à une concentration finale de 10 ng/ml de la pénicilline à une concentration finale de 100 U/ml et de la streptomycine à une concentration finale de 100 ug/ml. Ce mélange d'antibiotiques n'est plus ajouté rapidement après les premiers passages des cellules. Par rapidement, on entend après les 3 à 5 premiers passages en général. Un mélange de nucléoside peut être ajouté également, ce mélange étant constitué comme décrit précédemment (Pain et al., 1996). Parmi les milieux de bases testés dans ces mêmes conditions et qui donnent des résultats similaires, on trouve les milieux Ham F12, Glasgow MEM et le DMEM, ce dernier supplémenté en biotine à une concentration finale de 8 mg/1. A titre de comparaison, la concentration de biotine est de 0,2 mg/l dans le milieu MacCOy, de 0,0073 mg/l dans le Ham F12 et de 0 dans les milieux DMEM et GMEM commerciaux. Les facteurs de croissance et cytokines ajoutés dans le milieu de culture sont de façon privilégiée des facteurs et cytokines recombinantes dont le SCF de souris à une concentration finale de 1 ng/ml, l'IGF-1 à une concentration finale de 1 à 5 ng/ml, le CNTF à une concentration finale de 1 ng/ml, l'IL-6 à une concentration finale de 1 ng/ml, ainsi que le récepteur soluble de l'IL-6 à une concentration finale de 0,5 ng/ml à 1 ng/ml. Parmi les autres facteurs ajoutés dans certaines expériences, au moins au début durant par exemple les trois à dix premiers passages, le bFGF est utilisé à une concentration finale de 1 ng/ml, l'IL-11 est utilisée à une concentration finale de 1 ng/ml. L'ensemencement est réalisé dans ce milieu sur le feeder'inactivé composé de fibroblastes de souris établies en lignée, les cellules STO. Dans certains cas, ces cellules ont été transfectées avec des vecteurs d'expression simple permettant l'expression de facteurs de croissance comme le SCF aviaire, de façon constitutive dans les cellules STO. Ainsi, ce'feeder'produit le facteur sous une forme soluble et/ou attachée dans la membrane plasmique des cellules. Dans l'ensemencement initial des cellules directement dans ce milieu, le milieu est changé partiellement le lendemain, puis soit partiellement soit totalement durant les jours suivants selon la vitesse d'adhésion observée des cellules primaires. Après environ 4 à 7 jours selon les cas, la culture initiale est dissociée et passée dans de nouvelles boîtes dans le même milieu initial avec le feeder inactivé. Après trois à cinq passages, les cellules sont passées sur un feeder inactivé de cellules STO non transfectées ou transfecté avec un vecteur d'expression codant pour une résistance à un antibiotique comme le gène de résistance à la némycine, à l'hygromycine, à la puromycine,..... Après une vingtaine de passages, les cellules sont progressivement sevrées en facteurs de croissance et cytokines. Par sevrage progressif, on entend une suppression facteur par facteur dans le milieu de culture. A un passage, on enlève d'abord le SCF, puis deux ou trois passages après le IGF-1, si les cellules ne présentent pas d'altérations morphologique ou de variation dans leur vitesse de prolifération moyenne, puis ainsi de suite, les autres facteurs, comme le CNTF, l'IL-6 (toujours avec l'IL-6R). Ce sevrage peut être également drastique. On enlève alors en une seule fois tous les facteurs. Les cellules sont alors observées et ne sont passées que plusieurs jours après si leur vitesse de prolifération est modifiée. Cette dernière solution est en général celle qui est pratiquée. Différents isolats sont ainsi obtenus et maintenus pendant des périodes de temps très longues. Par périodes de temps très longues, on entend des durées de l'ordre de plusieurs semaines avec un minimum de 50 jours, de préférence des durées supérieures à 200 à 400 jours, sans limitations dans le temps. Des durées supérieures à 600 jours sont observées. Quel que soit le support utilisé toutes les cellules qui sont adhérentes sont dissociées avec une enzyme protéolytique de dissociation, telle que la pronase, la collagénase, la dispase, la trypsine, etc.... De préférence, un enzyme protéolytique d'origine bactérienne est utilisé, afin d'éviter tout contaminant potentiel d'origine animale. Ces cellules ont les caractéristiques des cellules souches embryonnaires avec une morphologie caractéristique de cellules souches i. e. une petite taille, un rapport nucléocytoplasmique important, un noyau avec au moins un nucléole bien visible, un très faible cytoplasme. Ces cellules sont caractérisées par une croissance en massifs plus ou moins compacts. Les cellules adhérentes et non adhérentes présentent une réactivité croisée avec un certain nombre d'anticorps, comme précédemment décrit dans Pain et al., 1996. et dans les brevets US 6,114, 168 et EP 787 180. La composante'activité télomérase endogène'est également présente et est un élément important de la nature'souche'de ces cellules. Des cellules de différents isolats sont obtenues et maintenues pendant de longue période de temps. Le tableau 1 illustre quelques unes des caractéristiques de ces isolats. Nom Espèce Début Arrêt jours Passage Génération S86N 16 Poulet S86 26-01-05-08-2001559207692 2000 WL3 Poulet WL 28-06-09-08-2001403153333 2000 Valo4 Poulet 26-09-07-02-2002 401 135 317 Valo 2000 S86N 45 Poulet S86 29-01- 12-11-2001 287 118 329 2001 On notera que le terme arrêt ne correspond pas à la fin de la prolifération des cellules mais à un arrêt volontaire des cultures de cellules de la part de l'expérimentateur. Le nombre de génération n est obtenu par la formule X= 2 n ou X est le nombre cumulé théorique de cellules. Ce nombre est disponible puisque les cellules sont comptées à chaque passage et lors de chaque ensemencement. L'historique complet de la culture est ainsi disponible. Exemple 3 : Passage des cellules Une des caractéristiques des cellules embryonnaires et des cellules souches embryonnaires en particulier est leur aptitude à proliférer in vitro pendant des périodes de temps considérables. Afin de propager et de passer les cellules, le milieu de culture est changé et remplacé par du milieu neuf quelques heures avant leur passage. La Courbe présentée en figure 1 illustre un profil de croissance et d'établissement des cellules. Exemple 4 : temps de doublement et temps moyen de division A partir des cellules établies en culture et présentées dans les exemples précédents, un temps moyen de division peut être calculé. Pour l'ensemble des isolats indépendants obtenus, la vitesse de prolifération s'accentue légèrement au cours des passages successifs faisant ainsi évoluer le temps moyen de division au cours de l'établissement des cellules. En phase adhérente, les cellules sont initialement ensemencées sur un tapis nourricier inactivé (appelé'feeder') et sont passées régulièrement à une densité constante d'ensemencement initial de 1 à 2 x 10 6 cellules par boîte de 100 mm. Le tableau 2 illustre le temps de doublement (d) et le temps moyen de division (TMD en heure) pour 3 types cellulaires établis en fonction du temps de culture. On observe que le temps moyen de doublement diminue au cours de l'établissement. Cellules/Jours 50 100 150 200 250 300 350 400 450 500 550 S86N 16 (d) 0, 30 0,63 1,00 0,86 1,13 1,15 1,47 1,70 1,94 1,50 1,9 S86N 16 (TMD) 80 38 24 27,9 21,2 20,9 16,3 14,1 12, 4 16 12, 6 S86N 45 (d) 0,49 0,89 0,89 1, 45 2, 15 x x x x x x S86N45 (TMD) 49 26,8 27 16,5 11, 1 x x x x x x Valo 4 (d) 0, 03 0, 61 1,00 1,17 1,26 1,03* 1,08* 1,25* x x x Valo 4 (TMD) > 48 39, 3 24 20, 5 19 23, 3 22,2 19,2 x x x Le temps de doublement moyen d est établi pour la période de temps indiquée en jours avec la formule suivante : d = (1/Log2 x (LogX2/Xl)) x 1/ (T2-Tl) où X2 et XI sont les nombres totaux de cellules aux instants T2 et Tl. Cette formule est la conséquence directe du calcul du nombre de génération N par la formule X= 2 n présenté dans l'exemple 1. Le Temps moyen de division (TMD) est alors obtenu en heures en divisant 24 heures par d. * les cellules Valo sont passées au cours de cet établissement sur support plastique sans présence de feeder. Le temps de doublement diminue puis re-augmente, quand les cellules se réhabituent à ce nouvel environnement. Exemple 5 : Contrôle du niveau de sérum pour la prolifération des lignées Lors de l'obtention de ces lignées, les milieux de culture utilisés sont des milieux de culture classiques comprenant une base (DMEM, GMEM, HamF12, McCoy, etc...) supplémentée de différents additifs tels que des acides aminés non essentiels, des vitamines, du pyruvate de sodium. Ce milieu complexe comprend du sérum de veau foetal, qui demeure un élément central de la culture, même si des composants de différentes origines dont des composants végétaux peuvent être progressivement utilisés. Un processus pour contrôler et habituer les cellules à des proportions relativement faibles de sérum de veau foetal est présenté. On parvient ainsi à maintenir des cellules en prolifération importante (Temps de division > 1) avec des pourcentages de sérum faible (2% par exemple dans le cas des cellules S86N 16) Les courbes présentées en figure 2 illustre la diminution relative de sérum pour un type cellulaire donné, les cellules S86N 16. Le temps de doublement et les temps moyens de division ont été également calculés et portés dans le tableau 2. On notera que le temps moyen de division augmente en fonction de la diminution relative de sérum. Une phase de rattrapage est néanmoins observée après quelques temps en culture dans les conditions mentionnées. Ce temps reste néanmoins inférieure à 24h (d > l), ce qui représente déjà une prolifération très intéressante en terme industriel même à des concentrations de sérum de 2 %, ce qui est déjà relativement faible. Des améliorations quant aux différents métabolites à utiliser peuvent être envisagées pour accroître ce temps et encore optimiser davantage les conditions de culture. Tableau 2 : Condition 10% 7,5% 3,75% 2% d 2, 02 1, 51 1, 47 1, 08 TMD 11, 9 15, 8 16, 3 22, 2 Les exemples sont pris entre les passages p204 et p 179 pour la condition 10%, entre p 198 et pi 76 pour le 7,5%, entre p224 et p201 pour le 3,75 % et entre p216 et pl 99 pour le 2%. Exemple 6 : Sevrasse des cellules en tapis nourricier Dans les conditions initiales de culture, la présence d'un tapis de cellules inactivée semble nécessaire pour obtenir des cellules souches embryonnaires comme il a été décrit préalablement. Ce tapis nourricier ou'feeder'ne semble plus nécessaire après un certain nombre de passages. Seul le plastique'traité culture'apparaît important. En effet, une des caractéristiques de certaines cellules eucaryotes est de proliférer sous forme adhérente. Afin de faciliter l'adhésion des cellules, les différents matériels plastiques utilisés sont traités'culture'. Ils subissent lors de leur fabrication un traitement qui ajoute des charges à la surface du plastique, charges qui favorisent les adhésions de la matrice extracellulaire des cellules. A l'inverse, le plastique non traité culture cellulaire, souvent appelé plastique de qualité bactériologique, n'est pas traité en surface par addition de charges spécifiques. L'adhésion des cellules y est en général très difficile, voir impossible, ou alors induit des changements de morphologie, de comportement souvent drastiques. Cette distinction entre les deux qualités de plastique permet d'obtenir selon les ensemencements qui y sont effectués des cellules avec des comportement différents. Un sevrage progressif des cultures en'feeder'inactivé permet d'obtenir après quelques passages des cultures homogènes de cellules souches directement ensemencées sur plastique'traité culture'. Les courbes de croissance comparative des cellules maintenues en présence et en absence de'feeder'inactivé sont présentées avec le cas des cellules S86N 16 en figure 3. Cette adaptation des cellules est progressive afin de ne pas perdre le caractère de cellules souches des cellules initialement maintenues sur'feeder'. Des dérives progressives sont ainsi faites. L'obtention de cellules proliférant sur plastique est l'aboutissement du processus de sevrage. Les temps de division montrent une sensibilité des cellules à leur environnement. Comme dans le cas du sevrage progressif en sérum, une adaptation est obtenue avec un effet de rattrapage sur les cellules après quelques passages dans les conditions définies. Tableau 3 : Condition 1,2 0,5 0,3 plastique D 1, 95 1, 84 1, 39 1, 42 TMD 12, 3 13 17, 3 16, 9 Les exemples sont pris entre les passages pl54 et psi 31 pour les 3 conditions 1,2 x 106, 0,5 x 106 et 0,3 x 106 cellules feeder et entre p 161 et p 139 pour la condition sur plastique seul. Exemple 7 : Sevrasse des cellules en facteurs de croissance Dans les conditions initiales de culture, la présence de facteurs de croissance est nécessaire. On peut distinguer schématiquement deux familles de facteurs : les cytokines et les facteurs trophiques. Les cytokines sont principalement des cytokines dont l'action passe par un récepteur qui s'associe à la protéine gpl30. Ainsi, le LIF, l'interleukine 11, l'interleukine 6, le CNTF, l'oncostatine, la cardiotrophine, ont un mode d'action semblable avec le recrutement au niveau du récepteur d'une chaîne spécifique et de l'association de cette dernière avec la protéine gpl30 sous forme monomérique ou parfois hétérodimérique. Dans quelques cas, l'association d'une forme soluble des récepteurs, forme décrite entre autres pour les récepteurs de l'interleukine 6 et du CNTF permet d'accroître l'effet prolifératif observé. Il a été montré préalablement que l'addition d'au moins une de ces cytokines semblait nécessaire à l'obtention des cellules souches embryonnaires. Les facteurs trophiques sont principalement le SCF, l'IGF-1, le bFGF, qui sont également utilisés au départ de la culture, comme décrit précédemment. Leur présence est également nécessaire pour obtenir et amplifier les cellules. En diminuant progressivement ces facteurs de croissance, il est possible d'obtenir après quelques passages des conditions de culture qui permettent la prolifération des cellules souches embryonnaires sans l'addition de facteur de croissance exogène. Les différents marqueurs utilisés pour caractériser ces cellules sont toujours positifs pour les cellules maintenues sans facteurs. Exemple 8 : Comparaison des milieux utilisés Ensemencées dans des milieux différents, les cellules ne sont pas obtenues avec les mêmes fréquences. La comparaison des compositions des milieux rend difficile l'identification d'un des composants en particulier. Il semble plus vraisemblable que l'ensemble de l'association permette un mieux dans la physiologie des cellules. Parmi les milieux privilégiés, on notera le milieu Ham F12, MacCoy, DMEM et un milieu DMEM enrichi en biotine. A partir d'un même isolat, des essais d'adaptation dans ces différents milieux sont réalisés. Exemple 9 : Etablissement des cellules non adhérentes Lors des passages successifs des cellules souches, un ensemencement à forte densité directement en boite bactériologique permet d'obtenir après quelques passages des cellules embryonnaires qui se détachent de leur substrat et qui prolifèrent en suspension sous forme de petits agrégats réguliers. Cette prolifération est encouragée sur plusieurs passages par simple dilution, dissociation mécanique et non-usage d'enzyme protéolytique. L'agitation des cultures est en général pratiquée mais ne représente pas un élément discriminant pour l'obtention des cellules non adhérentes. Comme les cellules adhérentes ces cellules présentent une morphologie caractéristique de cellules souches i. e. une petite taille, un rapport nucléocytoplasmique important, un noyau avec au moins un nucléole bien visible, un très faible cytoplasme. Ces cellules sont caractérisées par une croissance en petits agrégats plus ou moins compacts. Ces cellules non adhérentes présentent une réactivité croisée avec un certain nombre d'anticorps, comme précédemment décrit dans Pain et al., 1996. Ces cellules sont également positives pour l'activité télomérase endogène (comme présenté dans l'exemple 10 pour les cellules EB1, EB4 et EB5). En phase non adhérente, les cellules présentent une prolifération importante dans différents milieux. La densité initiale d'ensemencement ainsi que l'approvisionnement en milieu frais de façon très régulière assure des densités importantes qui peuvent aller au delà de 1 x 10 6 cellules par ml. Nom Cellules Passage Début jours Passage Génération parentales initial EBI S86N 16 pl11 20-01-2001 184 41 120 EB3 S86N 16pTl8 23-01-2001 381 17 40 EB4 S86N 45 ploo 25-09-2001 44 17 40 EB5 S86N 45 pl00 25-09-2001 44 17 40 On notera que le terme Début correspond à la mise en non-adhérence des cellules. Exemple 10 : Caractérisation des cellules établies Les cellules souches maintenues pendant des temps long de cultures sont caractérisées avec les mêmes critères que ceux décrits précédemment (Pain et al., 1996). On peut ainsi détecter de façon régulière l'activité alcaline phosphatase endogène, l'activité télomérase endogène et la réactivité avec certains anticorps spécifiques comme les anticorps SSEA-1 (TEC-01) etEMA-l. Un des critères important lors de l'établissement des cellules est la présence de la télomérase. Différents tests ont été faits au cours du maintien en culture des cellules à l'aide d'un kit de détection de la TRAP (Telomerase PCR Elisa, Roche). Les cellules sont détectées positives après différents passage en culture. Ainsi, l'activité télomérase est détectable pour les cellules S86N 16, les cellules S86N 45 ainsi que pour les cellules EB1, EB4 et EB5 qui en sont dérivées sous une forme non adhérente. Les CEF (Chicken Embryonic Fibroblasts) maintenus en culture primaire sont considérés comme négatifs. Le seuil d'une D. O. Toutes les analyses ont été réalisées sur un équivalent de 2000 cellules. Cellules Passage Télomérase D. O. S86N 16 p12 1, 7 p29 2,8 pl85 0,97 p204 0,95 S86N 16 EBI p134 1, 1 S86N 45 p50 0, 87 p58 1,1 p66 0,96 p94 1,2 S86N 45 EB 4 pl 12 1, 4 S86N45EB5pn20, 94 CEF* p4 0, 07 Exemple 11 : Transfection et induction des cellules Les cellules souches maintenues en croissance sur le long terme sont transfectées avec différents plasmides d'expression. Il a été montré que les cellules souches aviaires pouvaient être transfectées (Pain et al., 1999). En particulier, les cellules non adhérentes sont transfectées et différents systèmes de tri permettent de repérer les cellules transfectées de façon stable (tri cellulaire, dilution limite,...). Ces modifications génétiques peuvent s'effectuer au stade non différencié de la cellule souche. Cette modification obtenue, la cellule est alors induite à différencier spontanément ou par addition d'inducteur de différenciation. Dans ce cas, on peut utiliser l'acide rétinoïque à des concentrations de 10-8 M à 10--6 M, ou le dimethysulfoxide à des concentrations de 1 à 2 % final ou le butyrate de sodium à des concentrations de 10 - 4 à 10 -8 M, ou le phorbol ester (TPA, PMA,...) ou encore les lipopolysaccharrides (LPS) à des concentrations de 1 à 5 ug/ml final. Dans un autre exemple, les cellules peuvent former des corps embryoïdes en suspension, corps embryoïdes qui peuvent être mis à adhérer sur plastique après dissociation ou non des cellules qui les constituent. Ces cellules différenciées prolifèrent alors mais ont une capacité plus limitée de prolifération dans le long terme. En ciblant la modification génétique sur un gène qui influence la prolifération des cellules, on peut rendre ces cellules différenciées capables de proliférer sur le long terme. Exemple 12 : Infection des cellules Les cellules adhérentes et non adhérentes sont infectables par différents virus et rétrovirus dont les virus et rétrovirus aviaires. Ces cellules peuvent ainsi servir de support de réplication pour la production de stocks viraux destinés à la production de vaccins humains et vétérinaires vivants ou atténués selon les cas. Parmi les virus d'intérêt, on peut citer le CAV de la famille des circoviridés, certains coronavirus, comme le virus de la bronchite infectieuse aviaire (IBV), les hepadnavirus ; les herpesvirus le HSV (Herpes simplex virus), les orthomyxovirus comme le virus de la grippe, les paramyxovirus, comme les virus de la rougeole, des oreillons, de la rubéole, les picomavirus comme le virus de la polio, de l'hépatite A, les poxvirus, comme les avipox et les fowlpox virus, les reovirus comme les rotavirus et les rétrovirus comme les ALV (avian leukosis virus). REFERENCES Baba TW, Humphries EH. (1985). Formation of a transformed follicle is necessary but not sufficient for development of an avian leukosis virus-induced lymphom. Proc Natl Acad Sci USA 82 : 213-216. Beug H, von Kirchbach A, Doderlein G, Conscience JF, Graf T. (1979). Chicken hematopoietic cells transformed by seven strains of defective avian leukemia viruses display three distinct phenotypes of differentiation. Cell 18 : 375-390. Guilhot C, Benchaibi M, Flechon JE, Samarut J. (1993). The 12S adenoviral E1A protein immortalizes avian cells and interacts with the avian RB product. Oncogene 8 : 619-624 Kawaguchi T, Nomura K, Hirayama Y, Kitagawa T. (1987). Establishment and characterization of a chicken hepatocellular carcinoma cell line, LMH. Cancer Res 1987 47 : 4460-4464. Kim H, You S, Farris J, Foster LK, Foster DN. (2001). Post-transcriptional inactivation of p53 in immortalized chicken embryo fibroblast cells. Oncogene 20 : 3306-3310 Kim H, You S, Kim IJ, Foster LK, Farris J, Ambady S, Ponce de Leon FA, Foster DN. (2001). Alterations in p53 and E2F-1 function common to immortalized chicken embryo fibroblasts. Oncogene 20 : 2671-2682. Liu JL, Klein PA, Moscovici MG, Moscovici C. (1992). Monoclonal antibodies recognizing normal and retrovirus-transformed chicken hematopoietic cells. Virology 189 : 583-591 Moscovici C, Moscovici MG, Jimenez H, Lai MM, Hayman MJ, Vogt PK. (1977). Continuous tissue culture cell lines derived from chemically induced tumors of Japanese quail. Cell 11 : 95-103. Pain B., Clark M. E., Shen M., Nakazawa H., Sakurai M., Samarut J., Etches RJ (1996). Long-term in vitro culture and characterisation of avian embryonic stem cells with multiple morphogenetic potentialities. Development 122 : 2339-2348. Pain B., Chenevier P., Samarut J. (1999). Chicken embryonic stem cells and transgenic strategies. Cells Tissues Organs 165 : 212-219. Samarut J, Gazzolo L. (1982). Target cells infected by avian erythroblastosis virus differentiate and become transformed. Cell 28 : 921-929. Smith JR and Pereira-Smith OM (1996). Replicative senescence : implications for in vivo aging and tumor suppression. Science 273,63-67. REVENDICATIONS 1. Procédé d'obtention de lignées cellulaires aviaires, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes : a) mise en culture de cellules aviaires dans un milieu comportant l'ensemble des facteurs permettant leur croissance et un tapis nourricier inactivé. b) passage en modifiant le milieu de culture de sorte à obtenir un sevrage progressif ou total desdits facteurs, du sérum et/ou du tapis nourricier, c) établissement de lignées cellulaires adhérentes ou non-adhérentes capables de proliférer dans un milieu de base en l'absence de facteurs de croissance exogènes, de sérum et/ou du tapis nourricier inactivé. 2. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que les cellules issues des lignées obtenues à l'étape c) sont capables de proliférer pendant au moins 50 jours, de préférence au moins 600 jours. 3. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que les cellules issues des lignées obtenues à l'étape c) sont des cellules souches aviaires. 4. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que les cellules issues des lignées obtenues à l'étape c) sont des cellules souches embryonnaires aviaires. 5. Procédé selon l'une des revendications 1 à 4, caractérisé en ce que les cellules issues des lignées obtenues à l'étape c) sont des cellules souches adhérentes qui prolifèrent en l'absence du tapis nourricier inactivé. 6. Procédé selon l'une des revendications 1 à 4, caractérisé en ce que les cellules issues des lignées obtenues à l'étape c) sont des cellules souches non adhérentes qui prolifèrent en suspension dans un milieu dépourvu de facteurs de croissance exogènes. 7. Procédé selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce que les cellules issues des lignées obtenues à l'étape c) prolifèrent dans un milieu dépourvu de sérum. 8. Procédé selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce que les cellules issues des lignées obtenues à l'étape c) présentent au moins une des caractéristiques suivantes : - un rapport nucléocytoplasmique important, - une activité alcaline phosphatase endogène, - une activité télomérase endogène, une réactivité avec des anticorps spécifiques sélectionnés parmi le groupe des anticorps SSEA-1 (TEC01), SSEA-3, et EMA-1. 9. Procédé d'obtention de lignées aviaires selon l'une des revendications précédentes caractérisé en ce que les cellules issues des lignées obtenues à l'étape c) sont modifiées pour permettre une meilleure utilisation in vitro comme l'extension de la durée de vie ou des densités de croissance plus importantes ou encore des besoins en nutriments moins importants. 10. Procédé selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce que les cellules issues des lignées obtenues à l'étape c) sont modifiées pour produire une substance d'intérêt, notamment un polypeptide d'intérêt, un anticorps ou un virus atténué. 11. Procédé selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce que le milieu utilisé à l'étape a) comprend au moins un facteur sélectionné parmi les cytokines, notamment LIF, IL-11, IL-6, IL-6R, CNTF, Oncostatine et d'autres facteurs tels que le SCF, l'IGF-1 et le bFGF. 12. Procédé selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce que le tapis nourricier inactivé utilisé à l'étape a) se compose de cellules de fibroblastes dont des fibroblastes de souris établies en lignée, notamment de cellules STO transformées ou non. 13. Procédé selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce que les cellules utilisées à l'étape a) sont des cellules obtenues par suspension de cellules provenant de disques blastodermiques d'oeufs fécondés dans un milieu de culture comprenant au moins une cytokine, b-FGF, et SCF, lesdites cellules étant ensemencées sur un tapis de cellules nourricières, incubées, puis prélevées. 14. Procédé selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce que l'étape b) consiste en un sevrage progressif de chaque facteur de croissance ajouté dans le milieu de l'étape a), notamment une cytokine, b-FGF, et SCF, comprenant un passage dans un milieu neuf dépourvu d'au moins un desdits facteurs et à répéter différents passages successifs jusqu'à ce que le milieu soit dépourvu de l'ensemble desdits facteurs. 15. Procédé selon la revendication 14, caractérisé en ce que l'étape b) comprend en outre le sevrage du sérum. 16. Procédé selon l'une des revendications 14 ou 15, caractérisé en ce que l'étape b) comprend en outre le sevrage du tapis nourricier. 17. Lignées cellulaires et cellules susceptibles d'être obtenues à partir du procédé selon l'une des revendications 1 à 16, caractérisées en ce qu'elles sont capables de proliférer pendant au moins 50 jours, de préférence au moins 600 jours dans un milieu dépourvu de facteur de croissance exogène. 18. Lignées cellulaires et cellules susceptibles d'être obtenues à partir du procédé selon l'une des revendications 1 à 16, caractérisées en ce qu'elles sont capables de proliférer pendant au moins 50 jours, de préférence au moins 600 jours dans un milieu appauvri en sérum et en particulier dépourvu de sérum. 19. Lignées cellulaires et cellules susceptibles d'être obtenues à partir du procédé selon l'une des revendications 1 à 16, caractérisées en ce qu'elles sont capables de proliférer pendant au moins 50 jours, de préférence au moins 600 jours dans un milieu dépourvu de tapis nourricier. 20. Lignées cellulaires et cellules issues de telles lignées susceptibles d'être obtenues à partir du procédé selon l'une des revendications 1 à 16, caractérisées en ce qu'elles sont capables de proliférer pendant au moins 50 jours, de préférence au moins 600 jours dans un milieu dépourvu de facteur de croissance exogène, appauvri en sérum ou dépourvu de sérum et/ou de tapis nourricier. 21. Lignées cellulaires et cellules issues de telles lignées selon la revendication 20, caractérisées en ce qu'elles sont capables de proliférer pendant au moins 50 jours, de préférence au moins 600 jours dans un milieu de base, notamment dans un milieu tel que DMEM, GMEM, HamF12 ou McCoy supplémenté de différents additifs tels que des acides aminés non essentiels, des vitamines et du pyruvate de sodium. 22. Lignées cellulaires et cellules issues de telles lignées selon l'une des revendications 17 à 21, caractérisées en ce qu'elles sont des cellules souches aviaires. 23. Lignées cellulaires et cellules issues de telles lignées selon l'une des revendications 17 à 21, caractérisées en ce qu'elles sont des cellules souches embryonnaires aviaires. 24. Lignées cellulaires et cellules issues de telles lignées selon l'une des revendications 17 à 23, caractérisées en ce qu'elles sont des cellules souches adhérentes qui prolifèrent en l'absence du tapis nourricier inactivé. 25. Lignées cellulaires et cellules issues de telles lignées selon l'une des revendications 17 à 21, caractérisées en ce qu'elles sont des cellules souches non adhérentes qui prolifèrent en suspension. 26. Lignées cellulaires et cellules issues de telles lignées selon l'une des revendications 17 à 25, caractérisées en ce qu'elles présentent au moins une des caractéristiques suivantes : - un rapport nucléocytoplasmique important, une activité alcaline phosphatase endogène, une activité télomérase endogène, une réactivité avec des anticorps spécifiques sélectionnés parmi le groupe des anticorps SSEA-1 (TEC01), SSEA-3, et EMA-1. 27. Lignées cellulaires et cellules issues de telles lignées selon l'une des revendications 17 à 26, caractérisées en ce qu'elles sont modifiées génétiquement de sorte à produire une substance d'intérêt, notamment un polypeptide d'intérêt, un anticorps ou un virus atténué. 28. Lignées cellulaires et cellules issues de telles lignées selon la revendication 27, caractérisées en ce qu'elles supportent la réplication de virus vivants ou atténués, en particulier les virus sélectionnés dans le groupe des hepadnavirus, des herpesvirus, des orthomyxovirus, des paramyxovirus, des picomavirus, des poxvirus, des reovirus et des rétrovirus. 29. Lignées cellulaires et cellules issues de telles lignées selon la revendication 28, caractérisées en ce que les virus répliqués sur ces cellules appartiennent à la famille des orthomyxovirus, en particulier le virus de la grippe. 30. Lignées cellulaires et cellules issues de telles lignées selon la revendication 28, caractérisées en ce les virus répliqués appartiennent à la famille des paramyxovirus, en particulier les virus de la rougeole, des oreillons et de la rubéole. 31. Lignées cellulaires issues de l'étape c) du procédé selon l'une des revendications 1 à 16 caractérisées en ce qu'elles sont des cellules souches aviaires génétiquement modifiées capables de croître indéfiniment en milieu de base dépourvu de facteurs de croissance exogènes, appauvri en sérum et/ou dépourvu de sérum et/ou de tapis nourricier. 32. Utilisation des lignées cellulaires selon la revendication 31 pour la production de substances d'intérêt en particulier des protéines d'intérêt thérapeutiques. 33. Utilisation des lignées selon la revendication 31 pour la réplication de virus vivants ou atténués, en particulier les virus pris dans le groupe des hepadnavirus, des herpesvirus, des orthomyxovirus, des paramyxovirus, des picomavirus, des poxvirus, des reovirus et des rétrovirus. 34. Utilisation des lignées selon la revendication 31 pour la production de virus appartenant à la famille des orthomyxovirus, en particulier le virus de la grippe. 35. Utilisation des lignées selon la revendication 31 pour la production de virus appartenant à la famille des paramyxovirus, en particulier les virus de la rougeole, des oreillons et de la rubéole. 36. Utilisation des lignées selon la revendication 31 pour supporter la réplication de virus vivants ou atténués, en particulier par introduction du ou des composants nécessaires à l'accomplissement du cycle viral complet du virus dans la cellule en particulier la sur-expression du récepteur au virus à la surface de la cellule.