Brevet FR2824567A1 — publié le 20021115

canetterie, préalablement au soutirage. L' invention concerne l'obtention de lymphocyLes T CD4+ réqulateurs, utilisables dans le cadre de la prévention et du traitement de maladies auto-immunes et inflammatoires. Les maladies auto-immunes sont dues à une déréqulation du système immunitaire, qui se traduit par une réponse immune indésirable d'un organisme vis-à-vis de ses propres antigènes. On a tenté de manipuler les antigènes à l'origine de ces pathologies ou les cellules T agressives spécifiques de ces antigènes, mais les résultats obtenus ont souvent été très limités notamment par l' absence d'une connaissance de tous les antigènes impliqués dans la pathologie concernée. En effet, les auto-antigènes proprement dits, ou les antigènes responsables des désordres inflammatoires et auto-immuns ne sont pas touj ours connus, ou sont différents d'un individu à l'autre. Les traitements utilisés actuellement dans ces maladies sont soit des traitements palliatifs (insuline dans le cas du diabète, anti-histaminique dans le cas des désordres allergiques) soit des traitements systémiques par des anti-inflammatoires (AINS) et/ou des immuco-suppresseurs (glucocorticoides, cyclosporine, anticorps...). Il y a donc clairement un besoin pour un traitement immunosuppresseur puissant mais limité à l'organe atteint ou plus précisément à la zone d'hyperactivité du système immunitaire. Parmi les nombreux agents impliqués dans la réqulation de la réponse immune, on citera les lymphacyLes T CD4+, également dénommés lymphocyLes T auxiliaires (T helpers). On distingue classiquement 2 types principaux de lymphacytes T auxiliaires: les lymphocytes Thl, impliqués dans le développement de la réponse immune cellulaire, produisent des cytokines pro-inflammatoires telles que l' interleukine-2 (IL-2) et l' interféron g (IFNg) et présentent des effets activateurs des macrophages; les lymphacytes Th2, qui produisent des cytokines telles que les interleukines IL-4, IL-6, IL-10 et IL-13, favorisent la sécrétion d'anticorps. Des travaux récents auxquels a participé l'un des Inventeurs ont abouti à la découverte d'une nouvelle catégorie de cellules T réqulatrices, dont la prolifération est induite par l' activation de cellules T CD4 en présence d'interleukine 10 (IL-10), et qui ont été dénommoes lymphocyLes Trl (Demande PCT WO 97/42324). La poursuite de ces travaux a permis l'isolement et la caractérisation d'une nouvelle sous-population de cellules T réqulatrices, qui ont été dénommoes lymphocyLes Trl (GROUX et al., Nature, 389, 737-742, 1997). Cette sous-population lymphocyLaire a été obtenue par activations répétées de cellules T CD4+ en présence d'un antigène et d'interleukine 10 (IL-10). Lorsqu'elles sont re-stimuléss par l'antigène utilisé pour leur induction, les cellules Trl ne prolifèrent que faiblement, produisent des quantités très élevoes d'IL-10, des quantités importantes de TGF-p (tumor growth factor 0), de très faibles quantités d' IL-2, et ne produisent pas d' IL4. Lorsque des cellules Trl activées sont cultivéss en présence d'autres cellules T CD4+ elles suppriment la prolifération de celles-ci en réponse à un antigène i cet effet résulte de la sécrétion de cytokines, et notamment d' IL-10, par les lymphacytes Tr, et non d'une action directe de ceux-ci sur les cellules T CD4+; il peut donc être obtenu sans avoir à connaître l'antigène responsable de la prolifération de ces cellules. Ceci présente un avantage important dans le cas de maladies auto-immunes, dont on peut ainsi envisager le traitement sans qu'il soit nocessaire de connaître l'antigène exact contre lequel sont dirigées les cellules pathogéniques. Il a ainsi été observé, dans un modèle expérimental de maladie de Crchn chez la souris dans lequel les cellules pro-inflammatoires sont dirigées contre des bactéries commensales de la flore digestive, que l'administration aux animaux des cellules Trl dirigées contre l'ovalbumine, accompagnce de l' administration d'ovalLumine dans la nourriture, permettait de prévenir l'instauration d'une inflammation chronique du colon. D'autre part, dans des travaux récents sur différents modèles animaux de maladie de Crchn, de sclérose en plaques, ou de résction du greffon contre l'hôte, les Inventeurs ont montré que les cellules inhibitrices Trl étaient capables non seulement de prévenir, mais aussi de guérir ces différentes pathologies. Ils ont en outre observé que les cellules Trl migraient de façon spécifique et intense dans les différents sites inflammatoires. Cette propriété des cellules Trl représente un avantage supplémentaire dans l'utilisation de ces cellules comme vecteur de molécules anti-inflammatoires dans les sites d' intense inflammation. Des cellules Trl obtenues à partir des cellules T d'un patient sont donc potentiellement utilisables dans le cadre d'une thérapie cellulaire pour réquler la réponse immunitaire chez ce patient. Elles sont ainsi utilisables notamment pour prévenir ou soigner, non seulement les maladies auto-immunes et inflammatoires mentionnées ci-dessus, mais également toute autre pathologie caractérisée par une réponse inflammatoire aberrante, comme le diabète, le psoriasis, l'athérosclérose, la polyarChrite rhumatoide ou l'asthme; elles sont également utilisables dans le traitement des rejets de greffe ou de la réaction du greffon contre l'hôte. La méthode d'obtention des lymphocyLes Trl qui est décrite dans la publication de GROUX et al. citée ci-dessus, nécessite la stimulation répétée des cellules T avec I'antigène en présence d' IL-10. Cette méthode est lourde à mettre en uvre, et ne permet pas d'obtenir rapidement, à partir d'un patient, une population de lymphocytes Trl utilisable dans le cadre d'un traitement thérapeutique. Différentes équipes ont rapporté l'implication de différentes molécules de co-stimulation dans l'obtention de cellules posséJant des caractéristiques similaires à celles des cellules Trl, notamment au niveau de la production d' IL-10; les moléaules de stimulation potentiellement impliquces sont très diverses, et les effets rapportés apparaissent parfois contradictoires. BLEIJS et al. (Eur. J. Immunol., 29, 2248, 1999) ont ainsi observé que la co-stimulation par l' interaction de LFA-1 avec ICAM-1, ICAM-2 ou ICAM-3 induit une production importante de GM-CSF (Granulocyte-macrophage colony- stimulating factor), d'IFN-y,et d' IL-10 par des lymphocytes T stimulés par un anticorps anti-CD3. La production d' IL-10 est particulièrement importante lors de la co-stimulation par l' interaction LFA-1/ICAM-1. BULLENS et al. (Int. Immunol. 13, 181-191, 2001) rapportent que la costimulation par CD58 induit la production d' IL-10 et d'IFN-y par des cellules T stimulées par un anticorps anti-CD3. DONG et al. (Nat. Med., 5, 1365, 1999) ont décrit une moléaule de co-stimulation apparentée à la famille B-7, et dénommée B7-H1, qui induit préférentiellement la sécrétion d' IL-10. VAN GOOL et al. (Eur. J. Immunol., 29, 2367, 1999) ont observé que l' activation de cellules T par un alloantigène en présence d'anticorps bloquant les interactions CD80/CD28 ou CD86/CD28 et CD40/CD4OL induisait une anergie spécifique d'antigène, accompagnée d'une diminution de la production d'IFN-y et d'une augmentation de la production d' IL-10. CHABOT et al. (J. Immunol., 162, 6819, 1999) rapportent que la production d' IL-10, induite par l' interaction de cellules microgliales avec des lymphocyLes T est diminuée par le blocage de CD40/CD40L, B7/CTLA-4 ou B7/CD28, ou de CD23. Les Inventeurs ont maintenant mis au point un nouveau procédé permettant d'obtenir rapidement des lymphacyLes Trl antigène-spécifiques, en quantité bien supérieure à celle obtenue par l' activation de cellules T CD4+ en présence d' IL-10. Ils ont en effet constaté que la culture de cellules T CD4+ en présence d'un antigène inducteur, et de cellules présentatrices de l'antigène exprimant une molécule HLA de classe II et la molécule LFA-3 (CD58) humaine, mais n'exprimant aucune des moléaules co-stimulatrices B7-1 (CD80), B7-2 (CD86), B7-H1, CD40, CD23 et ICAM-1 (CD54), induisait la différenciation de cellules Trl spécifiques dudit antigène. La molécule LFA-3 est le ligand du récepteur CD2 des lymphocytes T. Deux formes de LFA-3 ont été décrites: une forme transmembranaire (WALNER et al., J. Exp. Med. 166, 923-932, 1987; Demande PCT WO 88/09826) et une forme, dénommoe " PI-linked LFA3 " qui est ancrée à la membrane cellulaire par l'intermédiaire d'un glycolipide contenant du phosphatidylinositol (Demande PCT WO 90/02181). La présente invention a pour objet l'utilisation de cellules présentatrices de l'antigène artificielles, exprimant une moléaule du système HLA de classe II et une molécule LFA-3 humaine, et n'exprimant aucune des molécules de co- stimulation B7-1, B7-2, B7-H1, CD40, CD23 ou ICAM-1 (CD54), pour l'obtention de lymphacyLes réqulateurs Trl spécifiques d'antigène. On définit comme lymphocytes réqulateurs Trl spécifiques d'antigène, des cellules posséJant les caractéristiques suivantes, après re-stimulation par ledit antigène: - elles produisent une quantité élevoe d' IL-10, à savoir une quantité égale ou supérieure à 3 x 103 pg/106 cellules, et généralement de 5 x 103 à 20 x 103 pg d' IL-10 pour 106cellules; - elles produisent une quantité d' IL-2 égale ou inférieure à 50 pg/106 cellules; le rapport IL-10/IL-2 produites par lesdites cellules est au moins égal à 50/1, généralement de 100/1 à 500/1; - elles produisent une quantité d' IL-4 égale ou inférieure à 50 pg/106 cellules; le rapport IL-10/IL-4 produites par lesUites cellules est au moins égal à 300/1, généralement de 500/1 à 10000/1; - la prolifération des cellules TCD4+ stimulées par un antigène en présence de cellules Trl est diminuce d' au moins 2 fois, généralement d' au moins 2 à 100 fois. La présente invention a notamment pour objet un procédé de préparation de lymphocytes réqulateurs Trl spécifiques d'antigène à partir des lymphacyLes d'un patient, caractérisé en ce qu'il comprend: - l'activation in vitro desdits lymphocyLes en présence de l'antigène choisi, présenté par des cellules présentatrices de l'antigène artificielles telles que définies ci-dessus; - la récupération, à partir desdits lymphocyLes, d'une population de lymphacyLes T CD4+ activés comprenant au moins 10%, de préférence au moins 50%, et de manière tout à fait préférée, au moins 80% de lymphocyLes Trl spécifiques dudit antigène. Des cellules présentatrices de l'antigène artificielles utilisables pour la mise en _uvre de la présente invention, peuvent avantageusement être obtenues par co-transfection de cellules animales n'exprimant aucune des molécules de co-stimulation indiquées ci-dessus avec une séquence d'acide nucléique codant pour la chaîne d'une molécule HLA de classe II, une séquence d'acide nucléique codant pour la chaîne d'une moléaule HLA de classe II et une séquence d'acide nucléique codant l'une quelconque des 2 formes du LFA-3. Si on le souhaite, ces cellules peuvent être également transfectées avec une séquence d'acide nueléique codant pour l'antigène vis-à-vis duquel on souhaite induire la spécificité des lymphocyLes Trl. Ces séquences d'acide nueléique peuvent être portées par des moléaules d'acide nualéique différentes, ou bien 2 ou plus d'entre elles peuvent être portées par la même molécule d'acide nucléique. Des cellules animales pouvant être utilisses pour - 25 l'obtention desUites cellules présentatrices de l'antigène artificielles peuvent être des cellules d'origine humaine, autologues ou hétérologues, ou bien des cellules d'origine xénagénique, notamment des cellules de mammifère. On peut utiliser des cultures primaires récemment isolées; généralement on préfèrera utiliser des lignces cellulaires établies, qui sont plus homagènes, et capables de proliférer pendant plusieurs générations. Il peut s'agir par exemple de fibroblastes, de kératinocytes, de cellules de tuLules de rein, de cellules de Schwann, de myablastes, de cellules endothéliales, etc. La molécule de CMH de classe II exprimée par les cellules présentatrices de l'antigène artificielles sera choisie parmi les différentes molécules HLA-2 humaines disponibles, en fonction du type HLA-classe II du patient à partir duquel sont prélevés de lymphocytes T CD4+, et de l'utilisation envisagée pour les cellules Trl. On utilisera généralement des cellules présentatrices de l'antigène artificielles exprimant une molécule HLA-2 également exprimée par le patient i toutefois, on peut également choisir une molécule HLA-2 différente de celles exprimées par ledit patient; il peut s'agir par exemple, si l'on souhaite produire des cellules Trl utilisables dans le cadre de la prévention du rejet de greffe, d'une molécule HLA-2 exprimée par les cellules du greffon; dans ce cas la molécule HLA-2 constitue l'antigène vis-à-vis duquel seront dirigées les cellules Trl obtenues. L'antigène utilisé pour la mise en _uvre du procédé conforme à l' invention sera choisi en fonction de l'utilisation à laquelle sont destinées les cellules Trl spécifiques d'antigène que l'on souhaite produire. Il peut s'agir d'un antigène associé à une pathologie inflammatoire ou auto-immune i il peut s'agir également d'un antigène sans rapport avec une pathologie particulière, mais qui pourra être administré si l'on souhaite activer les cellules Trl pour lutter contre une réponse immune indésirable. Le chargement de l'antigène sur les cellules présentatrices de l'antigène artificielles peut s'effectuer de manière classique, par co-incubation des cellules et dudit antigène. Celui-ci peut se présenter sous forme native, et être apprêté par lesUites cellules précentatrices de l'antigène; il peut également se présenter sous forme d'un ou plusieurs peptides antigéniques, pouvant être fixés directement par les molécules HLA-2 expriméss par lesUites cellules. Alternativement, l'antigène peut être exprimé par les cellules présentatrices de l'antigène artificielles, dans le cas o celles-ci ont été préalablement transtectéss avec une séquence d'acide noaléique codant pour celui-ci. Pour la mise en _uvre du procédé conforme à l' invention, l'activation in vitro des lymphocyLes peut s'effectuer directement sur des PBMCs (cellules mononocléées du sang périphérique) prélevées à partir dudit patient. Elle peut également s'effectuer sur des lymphocyLes T CD4+ préalablement purifiés à partir de ces PBMCs. L'activation des lymphocyLes s'effectue par co-culture de ceux-ci, pendant 2 à 10 j ours, de préférence pendant 6 à 8 j ours, en présence des cellules présentatrices de l'antigène artificielles décrites ci- dessus, chargées avec l'antigène choisi. A l' issue de cette période de culture, on sélectionne les lymphacytes T CD4+ activés sur la base de l'expression du marqueur CD4+, et d'un ou plusieurs marqueurs d' activation tels que CD25, CD69, CD45RO, etc... A l' issue de cette période de culture, on obtient une population cellulaire dans laquelle les lymphacytes Trl représentent au moins 10% et généralement entre 50 et 80% des lymphacyLes T antigène-spécifiques activées. Pour enrichir encore cette population en lymphocyLes Trl, on peut répéter la stimulation dans les conditions définies ci-dessus. On obtient alors une population de lymphocyLes T CD4+ activés comprenant au moins 30% et généralement entre 60 et 90% de lymphacyLes Trl parmi les cellules T antigène .. speclf 1ques. On peut également isoler des clones de lymphocyLes Trl à partir de cette population. Ces clones peuvent aisément être identifiés sur la base du profil caractéristique de production de cytokines des lymphocyLes Trl, tel que défini ci-dessus. L' expansion des clones peut être effectuée dans un milieu nutritif contenant des facteurs non-spécifiques de croissance tels que IL-4 et IL2. Une réalisation préférentielle est d'utiliser comme agent de stimulation des billes couplées avec des anticorps anti-CD3 et CD28. Les cellules Trl obtenues par le procédé conforme à l' invention présentent toutes les caractéristiques des cellules Trl obtenues par activation de lymphocyLes T CD4+ en présence d' IL-10, et ont donc les mêmes utilisations que celles-ci pour la réqulation de la réponse immunitaire. La présente invention a également pour objet un procédé de préparation d'une composition pharmaceutique destinée au traitement de maladies inflammatoires et/ou de maladies autoimmunes, caractérisé en ce qu'il comprend la préparation de lymphocyLes Trl spécifiques d'antigène par un procédé conforme à l' invention, et le conditionnement desdits lymphacytes Trl sous une formulation approprise à leur administration à un patient. La présente invention sera mieux comprise à l' aide du complément de description qui va suivre, qui se réfère à des exemples non-limitatifs illustrant la mise en _uvre du procédé conforme à l'invention. EXEMPLE 1: PREPARATION DE LYMPHOCYTES Tr Isolement de cellules T CD4+ Des cellules mononucléées périphériques (PBMC) sont obtenues par centrifugation sur Ficoll-Hypaque. Les cellules T CD4+ sont obtenues par élimination des cellules non-CD4+, en utilisant des anticorps anti-CD8 (L533), anti-CDllb (OKM1), et antiCD20(2H7), selon le protocole suivant. Les cellules sont incubées avec des concentrations saturantes d'anticorps pendant 20 minutes à 4 C. Après lavage, on ajoute des billes DYNABEADS (DYNAL, Oslo, Norvège), à raison d'un rapport billes/cellules-cibles de 1/1, et l'on incube pendant 1 heure à 4 C. Les billes portant les cellules non-CD4+ sont éliminées par application d'un champ magnétique. L'analyse par cytofluorométrie de flux (FACSstar, BECTON DICKINSON) des cellules restantes montre qu'elles comprennent 90 à 95% de cellules T CD4+. Obtention de cellules présentatrices de l'antigène artificielles Des cellules fibroblastiques L (ATCC CCL-1) de souris ont été co-transfectées avec des séquences d'acide nucléique codant pour LFA-3 et pour une molécule HLA de classe II. Obtention d'un ADNc codant pour LFA-3 Un ADNc codant pour LFA-3 a été préparé à partir d'une banque d'ADNc total de cellules mononucléées périphériques humaines, par amplification en chaîne par polymérase (PCR) en utilisant l'amorce dénommée 5'LFA-3, qui comprend la séquence des nucléotides 13 à 33 de la séquence codant pour le LFA-3 humain (numéro d'accès GENBANK X06296), flanquse en (5') d'un site KpnI, et l'amorce dénommée 3'LFA- 3, qui comprend la séquence des nucléotides 708 à 728 de la séquence codant pour le LFA-3 humain, flanquée en (5') d'un site NotI. Obtention d'ADNc codant pour DR1 Un ADNc codant pour la chaîne alpha de DR1 a été obtenu à partir d'une banque d'ADNc total de cellules mononualéces périphériques humaines d'un donneur DR1+, par amplification en chaîne par polymérase (PCR) en utilisant les amorces dénommées DR1A5' et DR1A3', qui comprennent respectivement la séquence des noaléctides 151 à 176, et la séquence des nualéotides 769 à 792 de la séquence codant pour la chaîne alpha de DR1 (numéro d'accès GENBANK KO1171). Un ADNc codant pour la chaîne bêta de DR1 a été obtenu de la même manière en utilisant les amorces dénommoes DR1B5' et DR1B3' qui comprennent respectivement la séquence des nucléotides 52 à 74 et 850 à 923 de la séquence codant pour la chaîne bêta de DR1 (numéro d'accès GENBANK NM002124). Transfection des cellules Chacun des ADNc obtenus a été cloné dans un vecteur pcDNA 3.1/hygro (INVITROGEN), au site TA. Les vecteurs obtenus ont été utilisés pour co-transfecter les cellules L par électroporation. Les transfectants stables sont triés par cytofluorométrie de flux (FACSVantage SE, BECTON DICKINSON) en marquant les cellules à l'aide d'un anticorps anti-LFA-3 (1C3) et d'un anticorps anti-DR (L243). Les cellules exprimant à la fois LFA-3 et DR sont retenues, et mises en culture sur milieu F12 (LIFE TECHNOLOGIES) supplémenté avec % de sérum de veau f_tal (BOEHRINGER), et additionné de pénicilline et de streptomycine. Des cellules présentatrices de l'antigène co- exprimant LFA-3 et DR1 ont également été préparées, comme décrit cidessus, par co-transfection de cellules P815 (ATCC- TIB64). A titre de témoins, des cellules L ou P815 non- transfectées, ou des cellules obtenues par transfection de cellules L ou P815, et exprimant uniquement la moléaule DR1 ont également été utilisées. Obtention de lymphacytes Tr Des cellules T CD4+ isolées comme décrit ci- dessus, à partir de PBMCs d'un donneur non-DR1 sont suspendues, à raison de 2 x 106 cellules/ml, dans du milieu de YSSEL (YSSEL et al., J. Immunol. Methads, 72, 219-227, 1984). La suspension cellulaire est répartie dans une plaque de culture à 24 puits, à raison de 1 ml par puits. Des cellules transfectées L-DR1-LFA3 ou des cellules transfectées L-DR1, obtenues comme décrit ci-dessus, ou à titre de témoin, des cellules lymphoblastoides B-EBV DR1+ sont irradiées (60 Gy) et ajoutées dans chaque puits, à raison de 5 x 105 cellules/ml. Après incubation pendant 7 jours, les cellules sont récoltées et lavées dans du PBS, puis marquces à l'aide d'anticorps anti-CD4 (RPA-T4) et antiCD25 (M-A251). Les cellules CD4+CD25+ sont trices par cytofluorométrie de flux, et sont clonces à raison de 1 cellule/puits dans une plaque à 96 puits, dans du milieu de YSSEL. L' expansion clonale est effectuée en présence d' IL-2 et d' IL-4 par la technique décrite par SPITS et YSSEL (J. Immucol. MethoUs, 9, 416-421, 1996). Après expansion clonale, les différents clones sont re-stimulés par des cellules lymphoblastoides BEBV DR1+. 48 heures après stimulation, le surnageant cellulaire est réaupéré et le profil de production des cytokines IL-10, et IFN-y en réponse à cette stimulation a été déterminé par dosage de ces cytokines par ELISA selon le protocole décrit par ABRAMS et al.( Curr. Protocols Immucol., 13, pp 6.1-6-15, 1995). Les résultats illustrés dans le Tableau I ci-dessous représentent la production de cytokines IL-10, et IFN-y de cellules Trl (moyenne + écart type de 10 clones) de 2 donneurs différents. Tableau I CelluleDonneur 1 Donneur 2 IL-10(pg/ml) I FN-y(pg/ml) I L-10(pg/ml) I FNy(pg/ml) L-DR1326 40 13372 1500 3657 324 9638 63 _ L-DR1-LFA-32315+183 19403+975 6402+272 914 322 B-EBV DR1+ Dans une autre série d'expérimentations, les cellules T CD4+ isolées à partir de PBMCs d'un donneur DR1+ sont mélangées, comme décrit ci-dessus, avec des cellules présentatrices de l'antigène exprimant la moléaule DR1 et la molécule LFA-3. Un antigène inducteur (peptide HA 307-319, correspondant à un fragment de l'antigène de capside du virus Haemophilus influenzae) est ajouté au mélange de cellules, à raison de 50 ug/ml. Après incubation pendant 3 j ours, les cellules CD4+CD25+ sont triées par cytofluorométrie de flux, et sont clonces comme décrit ci-dessus. Après expansion clonale, les différents clones sont re-stimulés par des cellules lymphoblastoides B-EBV chargées avec le peptide HA (10 pM). 48 heures après stimulation, le surnageant cellulaire est réaupéré et le profil de production de cytokines IL-2, IL-4, IL-10, et IFN-y en réponse à cette stimulation a été déterminé par dosage de ces cytokines par ELISA selon le protocole décrit par ABRAMS et collaborateurs. La majeure partie (environ 70%) des clones CD4+CD25+ isolés présentent le profil de production de cytokines des cellules Trl. Les profils de production de cytokines de 9 de ces clones Trl sont illustrés par le tableau II ci-dessous. Tableaull .... Clone IL-2 (pg/ml) IL-4 (pg/ml) IL-10 (pg/ml) IFN-y (pg/ml) HA-1 A12 HA-1 B6 HA-1 C9 HA-1 E5 HA-1 E7 40 HA-1 F2 HA-2B6 HA-2D5 32 HA-2F2 Des clones de cellules Trl posséJant le même profil de production de cytokines ont également été obtenus en utilisant comme cellules présentatrices de l'antigène les cellules P815-DR1-LFA-3, ce qui montre que l'obtention de cellules Trl n'est pas liée aux propriétés de la lignée cellulaire à partir de laquelle sont obtenues les cellules présentatrices de l'antigène. EXEMPLE 2: PROPRIETES IMMUNOREGULATRICES DES LYMPHOCYTES TR1 OBTENUS PAR LE PROCEDE CONFORME A L' INVENTION Les propriétés immunoréqulatrices des cellules Trl antigène spécifique ont été testées comme suit: Des cellules T CD4+ humaines issues d'un donneur DR1+ (1 x 106/ml) sont stimulées par des monocyLes syngéniques (1 x 106/ml) irradiés (60 GY), en présence du poptide HA 307-319 (50 M) et d'anatoxine tétanique (TT:50 rg/ml). Parallèlement, la même expérimentation est effectuée en ajoutant des cellules (2 x 105/ml) d'un clone Trl HA spécifique obtenu comme décrit cidessus, seules ou en présence d'un anticorps dirigé contre le récepteur d' IL-10 (anti-IL-lOR, 10 g/ml), d'un anticorps anti-TGF-(20 g/ml), ou d'un mélange de ces 2 anticorps. La prolifération des cellules T CD4+ est déterminée après 5 j ours, par mesure de l' incorporation de thymidine tritiée. Les résultats obtenus pour 3 clones Trl HA spécifiques sont illustrés par la figure 1. Légende de la figure 1: En ordonnée: prolifération (thymidine tritice incorporée, en cpm). En abscisse: Medium: cellules T CD4+ non-stimulées i TT+ HA peptide: cellules T CD4+ stimulées par le peptide HA 307-319 et l'anatoxine tétanique; +Trl HA specific: cellules T CD4+ stimulées par le poptide HA 307-319 et l'anatoxine tétanique, en présence des cellules Trl spécifiques de l'antigène HA i +anti IL-1OR: cellules T CD4+ stimulées par le poptide HA 307-319 et l'anatexine tétanique, en présence des cellules Trl spécifiques de l'antigène HA, et d'anticorps anti-IL- lOR; +anti-TGF-p: cellules T CD4+ stimulées par le peptide HA 307-319 et l'anatoxine tétanique, en présence des cellules Trl spécifiques de l'antigène HA, et d'anticorps anti-TGF-p; +anti IL-lOR+anti-TGF-p; cellules T CD4+ stimulées par le peptide HA 307-319 et l'anatoxine tétanique, en présence des cellules Trl spécifiques de l' antigène HA, et d' un mélange d'anticorps anti-IL-lOR et d'anticorps anti-TGF-. Ces résultats montrent que les lymphocyLes Trl obtenus par le procédé conforme à l' invention diminuent considérablement la prolifération antigène spécifique des cellules T CD4+. Cet effet inhibiteur n'est que très faiblement atténué par des anticorps anti-IL-lOR ou anti- TGF-p séparés, et est partiellement annulé par un mélange des 2 anticorps. REVENDI CAT IONS 1) Utilisation de cellules présentatrices de l'antigène artificielles, exprimant une molécule du système HLA de classe II et une molécule de LFA3 humain et n'exprimant aucune des molécules de co-stimulation B7-1, B72, B7-H1, CD40, CD23 ou ICAM-1, pour l'obtention de lymphocyLes réqulateurs Trl spécifiques d'antigène. 2) Procédé de préparation de lymphocytes réqulateurs Trl spécifiques d'antigène à partir des lymphocyLes d' un patient, caractérisé en ce qu' il comprend: - l'activation in vitro desdits lymphacytes en présence de l'antigène choisi, présenté par des cellules présentatrices de l'antigène artificielles telles que définies dans la revendication 1 i - la réaupération, à partir desdits lymphocytes, d'une population de lymphocyLes T CD4+ activés comprenant au moins 10% de lymphocyLes Trl spécifiques de l'antigène choisi. 3) Procédé selon la revendication 2, caractérisé en ce que les cellules présentatrices de l'antigène artificielles utilisées sont obtenues par co-transfection de cellules de mammifères choisies parmi les fibroblastes, les kératinocyLes, les cellules de tubules de rein, les cellules de Schwann, les myoblastes, les cellules endothéliales, avec une séquence d'acide nucléique codant pour la chaîne d'une moléaule HLA de classe II, une séquence d'acide nucléique codant pour la chaîne d'une molécule HLA de classe II et une séquence d'acide nucléique codant pour le LFA-3 humain. 4) Procédé selon une quelconque des revendications 2 ou 3, caractérisé en ce que l' activation in vitro desdits lymphacyLes s'effectue par co-culture desUits lymphocyLes et desdites cellules présentatrices de l'antigène en présence de l'antigène choisi. ) Procédé selon une quelconque des revendications 2 à 4, caractérisé en ce qu'il comprend la répétition de l'étape d' activation in vitro des lymphacyLes T CD4+ en présence de l'antigène choisi, et la récupération d'uné population cellulaire.comprenant au molns 30% de lymphocytes Trl spécifiques dudit antigène. 6) Procédé selon une queleanque des revendications 2 à 5, caractérisé en ce qu'il comprend en outre l'isolement et l'expansion de clones de lymphacytes Trl à partir de la population cellulaire récupérée. 7) Procédé de préparation d'une composition pharmaceutique destinée au traitement de maladies inflammatoires et/ou de maladies autoimmunes, caractérisé en ce qu'il comprend la préparation de lymphocyLes Trl spécifiques d'antigène par un procédé selon une quelconque des revendications 2 à 6, et le conditionnement desdits lymphacyLes Trl sous une formulation appropriée à leur administration à un patient.