Brevet FR2824756A1 — publié le 20021122

résistance à la pression élevée suivie de la réduction et du formatage. La présente invention a pour objet un procédé de préparation de microparticules à base de protéines végétales, et l'utilisation de ces particules dans les domaines pharmaceutique, vétérinaire, cosmétique, agro- alimentaire, chimique et biomédical. La microencapsulation regroupe l'ensemble des technologies permettant d'obtenir des particules individualisées dont la taille est comprise entre 1 m et 1 mm, et conduisant à l' inclusion de substances ou de principes actifs au sein d'un matériau support. On distingue classiquement deux groupes de microparticules: - les microcapsules ou systèmes réservoirs: ce sont des particules sphériques constituces d'une enveloppe solide et d'un c_ur de matière active liquide, solide ou pâteuse, - les microsphères ou systèmes matriciels: elles sont constituces d'un réseau continu de matériau enrobant dans lequel est dispersée la substance à encapauler. I1 existe trois types de procédés d' encapsulation: des procédés physicochimiques (coacervation simple, coacervation complexe, évaporation de solvant, extraction-évaporation de solvant, fusion à chaud du matériau enrobant), des procédés chimiques (polycondensation interfaciale, polymérisation en milieu dispersé et gélification du matériau enrobant) et des procédés mécaniques (encapsulation en lit d' air fluidisé, par atomisation et par prilling). La coacervation complexe repose sur le phénomène de désolvatation de macromolécules, l'une chargée positivement et l'autre négativement, aboutissant à la formation de deux phases non miscibles, à partir de solutions aqueuses colloïdales initialement homogènes. Ces deux phases sont: - le coacervat, riche en polymère et appauvri en eau, qui résulte de la formation de complexes entre les macromolécules chargées positivement et cell es chargées négativement, - le surnageant pauvre en polymère et riche en eau. L' encapsulation d'une huile par coacervation complexe consiste à émulsionner l'huile dans une solution de deux polymères. La coacervation est induite par ajustement du pH du milieu. Les complexes polymères formés s' adsorbent sur les gouttelettes d'huile et les isolent ainsi du milieu extérieur. La paroi formée est durcie par refroidissement du milieu et réticulée par l' action d'un agent de réticulation. L'encapeulation d'une substance active offre des avantages importants tels que sa protection vis-à-vis d' agents extérieurs ou sa libération lente, retardée ou différée au site d'utilisation. Pour des applications dans les domaines pharmaceutique, vétérinaire, cosmétique, agro-alimentaire et biomédical, les matériaux les plus recherchés comme constituants de la paroi sont des substances naturelles, en particulier les protéines ou les polysaccharides, en raison de leur biocompatibilité et de leur biodégradabilité. Parmi ces biopolymères, l'alLumine, la gélatine, le collagène et la caséine ont fait l'objet de nombreux travaux. Ainsi, des capsules d'albumine et d'alginate de sodium ont été préparées par coacervation complexe pour développer un système d' encapsulation de protéines et de polypeptides (Singh et al., J. Pharm. Pharmacol., (1989) 41, 670-673). Une autre étude décrit l'encapaulation d'un principe actif dans des microsphères de caséine, préparées par émulsion-extraction de solvant, et il a été démontré que cette protéine de lait constituait un support potenti el pour des préparat ions oral es à libération prolongée (Latha et al., J. Control. Rel., (1995) 34, 1-7). Depuis quelques années, une nouvelle approche consiste à utiliser des protéines d'origine végétale plutôt qu'animale. En effet, depuis la découverte de l'encéphalopathie spongiforme d'origine animale (maladie de la "vache folle"), les consommateurs ne font plus confiance aux produits susceptibles d'être contaminés par le prion, agent potentiellement responsable de cette pathologie. Il devient donc nécessaire de trouver un substitut aux protéines animales telles que la gélatine et l'albumine. Dans la littérature, plusieurs techniques d' encapsulation à partir de ces polymères d'origine végétale ont été décrites. Un antibiotique a pu être encapsulé par coacervation simple en utilisant le gluten de blé et la caséine comme matériaux d'enrobage, dans le but d'obtenir un système à libération prolongée (Jiunn-Yann Yu et al., J. of Fermentation and Bioengineering, (1997) Vol 84, 5, 444-448). Un autre système à libération contrôlée a été développé à partir de nanoparticules de gliadine (fraction protéique du gluten de blé) obtenues par une méthode basée sur la désolvatation de macromolécules, par addition d'une phase organique de protéine à une phase aqueuse (Ezpeleta et al., Int. J. Pharm., (1996) 131, 191-200). D'autres travaux ont montré qu'il était possible de fabriquer des nano- et des microparticules à partir de viciline (protéine de pois) par coacervation simple (Ezpeleta et al., J. Microencapsulation, (1997), Vol. 14, n 5, 557-565). Enfin, il est possible de préparer des particules possédant une paroi formée de protéines végétales par une réaction de réticulation interfaciale entre ces protéines et un agent réticulant polyfonctionnel acylant. Cette méthode permet d'encapsuler des substances actives à l'état de solution, de suspension ou d'émulsion et toute protéine végétale peut être utilisée, notamment celles qui sont extraites du blé, du soja, du pois, du colza, du tournesol, de l'orge ou de l'avoine (WO 99/03450). En ce qui concerne la méthode de coacervation complexe, les couples classiquement utilisés sont la gélatine comme polycation et l'alginate de sodium, le polyphosphate ou la gomme arabique comme polyanion. Des études ont montré que la gélatine pouvait étre substituée par de l'albumine bovine (Singh et al., J. Pharm. Pharmacol., (1989) 41, 670-673). Bien que la tendance soit d'utiliser des produits naturels d'origine végétale comme substitut des protéines animales, aucun procédé d' encapsulation par coacervation complexe à partir de protéines végétales n'a pu étre mis en muvre. En effet, les protéines végétales ne sont pas pures; elles présentent de gros problèmes de solubilité du fait de la présence d'une fraction soluble et d'une S fraction insoluble et possèdent également un pouvoir émulsifiant faible par rapport à celui des protéines animales, ce qui rend nécessaire l'utilisation de tensioactifs supplémentaires qui interfèrent dans la phase de fixation des coacervats. Or, les inventeurs, de manière surprenante, ont mis au point un procédé qui résout l'ensemble de ces problèmes. Les inventeurs ont réussi à définir un nouveau procédé qui permet l'utilisation de ces protéines dans une technique de coacervation complexe. Aussi, la présente invention a pour objet un procédé de fabrication de microcapsules contenant un matériau à encapsuler, caractérisé en ce qu'on soumet un mélange d' au moins une protéine végétale solubilisée et d'un polyclectrolyLe de charge opposée à ladite protéine à une coacervation complexe en milieu aqueux suivie éventuellement d'un durcissement, en présence dudit matériau à encapsuler. Dans un mode de réal i sat ion pré férée de l' invention, le procédé comprend: a) la solubilisation d' au moins une protéine végétale en milieu aqueux à un pH compris entre 2 et 7 et inférieur au pH isoélectrique de ladite protéine, b) la centrifugation de la solution obtenue en a), c) le mélange du surnageant obtenu en b) avec une solution aqueuse d'un polyélectrolyte de charge opposée à celle de la protéine végétale, d) la coacervation des polyélectrolyLes sous la forme de complexes de polymères, et éventuellement le durcissement des capsules, en présence du matériau à encapsuler. L7étape b) de centrifugation est réalisée dans des conditions bien choisies, notamment à une vitesse comprise entre 2 000 et 15 000 t/min préférentiellement entre 4 000 et 12 000 t/min, pendant 10 à 30 minutes. Dans un mode de réalisation particulièrement avantageux de l' invention, le procédé est caractérisé en ce que l'on augmente la quantité de protéines solubles par: e) addition d'une quantité de protéines végétales au surnageant dans le but d'atteindre la saturation, f) centrifugation du mélange, et g) éventuellement répétition des étapes e) et f) plusieurs fois. De manière très avantageuse, le procédé de fabrication selon l' invention est caractérisé en ce que l'étape c) est mise en _uvre à un pH inférieur au pH isoélectrique de la protéine végétale afin que ladite protéine soit utilisoe dans l'étape d) de coacervation complexe comme polyélectrolyte cationique. D'une autre manière avantageuse, le procédé de fabrication d'une paroi de microcapsules à base de protéines végétales est caractérisé en ce que l'étape c) est mise en _uvre à un pH supérieur au pH isoélectrique de la protéine végétale afin que ladite protéine soit utilisée dans l'étape d) de coacervation complexe comme polyélectrolyte anionique. La concentration en protéines dans la solution initiale est généralement comprise entre 2 et 15%, la concentration du surnageant de la solution initiale de protéines centrifugées entre 1 et 8%, et la concentration en protéines dans la solution de coacervation entre 1,5 et 5%. Les protéines végétales utilisées dans le cadre de l' invention sont extraites de végétaux choisis dans le groupe comprenant: lupin (genre Lupinus), soja (genre Glycine), pois (genre Pisum), pois chiche (Cicer), luzerne (Medicago), féverole (Vicia), lentille (Lens), haricot (Phascolus) , colza (Brassica), tournesol (Helianthus) et des céréales comme le blé, le maïs, l'orge, le malt et l'avoine. A titre d'exemple, on peut citer les protéines végétales SWP100 et SWP50 et celles commercialisoes sous le nom Supro 670 et PISANE@. Avantageusement, le polyélectrolyte anionique est choisi parmi ceux classiquement utilisés par l'homme du métier, notamment ceux qui sont choisis dans le groupe comprenant l'alginate de sodium, la gomme arabique, les polyphosphates, la carboxyméthylcellulose de sodium, le carraghénanne, la gomme xanthane et les protéines végétales de pH supérieur au pHi. De manière avantageuse, le polyélectrolyLe cationique est un de ceux classiquement utilisés par l'homme du métier notamment ceux qui sont choisis dans le groupe comprenant les agents tensioactifs cationiques, les latex possédant un ammonium quaternaire, le chitosane et les protéines végétales de pH inférieur au pHi. Lorsque le procédé comprend une étape de durcissement, celle-ci peut être réalisée par toute technique connue de l'homme du métier notamment par réticulation par un agent réticulant choisi dans le groupe comprenant les dialdéhydes tels que le glutaraldéhyde et les tanins tels que l'acide tannique. Lorsque le polyélectrolyte cationique est le chitosane, le durcissement est réalisé en utilisant l'anhydride acétique comme agent durcisseur. Dans un mode de réalisation particulièrement avantageux de l' invention, on utilise un couple polycation/polyanion choisi dans le groupe comprenant les couples: SWP100/alginate, SWP100/gomme arabique, chitosane/Supro@, Supro/alginate ou Supro@/gomme arabique. Les microcapsules obtenues par le procédé selon l' invention ont un diamètre compris entre 5 et 500 m, de préférence 20 et 200 m, plus préférentiellement de 20 à m. Les microcapaules selon l' invention peuvent contenir des substances aptes à être utilisces dans les domaines pharmaceutique, vétérinaire, cosmétique, agro- alimentaire, chimique et biomédical, en particulier des principes actifs. Elles peuvent être combinées avec tout ingrédient actif ou tout excipient bien connu de l'homme du métier. Les exemples qui suivent illustrent l' invention sans toutefois la limiter. EXEMPLE 1: Coacervation complexe à partir de la protéine SWP100 en présence d'alginate. Une solution de SWP100 à 10% maintenue à pH 3 est centrifugée pendant 25 minutes à 4500 t/min. On obtient 48 mL de surnageant contenant 0,72 g de protéines dissoutes. Dans cette solution de surnageant, 20 g de Miglycl 812 sont émulaionnés. On ajoute alors 35,6 mL d'une solution aqueuse d'alginate de sodium (0,36 g) et ensuite un volume de 96 mL d'eau. La température du milieu est de 40 C. Le pH du milieu est abaissé de 4,22 à 3 par aj out d'acide chlochydrique 1N. Le rapport massique SWP100/alginate est égal à 2 et la concentration finale dans la phase aqueuse en SWP100 est de 0,4% poids/volume et elle est de 0,2% poids/volume pour l'alginate. La coacervation complexe se réalise et le milieu est refroidi à 10 C et maintenu à 10 C pendant 1 heure. 1,5 mL de glutaraldéhyde à 25% est additionné dans le milieu à 10 C. Puis on laisse revenir le milieu à température ambiante et le milieu est maintenu sous agitation pendant heures. On obtient une dispersion de microcapsules contenant % d'huile, de taille moyenne comprise entre 200 et 400 um. Des microcapsules dont le rapport massique SWP100/alginate est égal à 1, sont préparées par la méme technique. EXEMPLE 2: Coacervation complexe à partir de la protéine SWP100 en présence de gomme arabique. Une solution de 100 mL de SWP100 à 17% maintenue à pH 3 est centrifugée pendant 25 minutes à 4500 t/min. On obtient 100 mL de surnageant contenant 2,6 g de protéines dissoutes. Dans cette solution de surnageant, 20 g de Miglycl 812 sont émulefonnés. On ajoute 45 mL d'une solution aqueuse de gomme arabique (5 g) et un volume d'eau de 13 mL. La température du milieu est de 40 C. Le pH du milieu est abaissé à 3 par aj out d'acide chlorhydrique 1 N. Le rapport massique SWP100/gomme arabique est égal à 1/2 et la concentration finale de SWP100 dans la phase aqueuse est de 1,5% poids/volume et elle est de 3% poids/volume pour la gomme arabique. La coacervation complexe se réalise et le milieu est refroidi à 10 C. Le milieu est laissé sous agitation pendant 1 heure et 3 mL de glutaraldéhyde à 25% sont ensuite ajoutés. Puis on laisse revenir le milieu à température ambiante toujours sous agitation pendant 6 heures. On obtient une dispersion de microcapsules contenant 72,5% d'huile, de taille moyenne comprise entre 150 et 450,um. EXEMPLE 3: Influence de l' augmentation de la concentration en protéine SWP100 dans le surnageant. Coacervation complexe à partir de la protéine SWP100 en présence d'alginate. Le pH d'une solution protéique de SWP 100 à environ % (20 g dans 130 g d'eau) est ajusté à un valeur de 4. La solution est centrifugée une première fois à 12 000 t/min pendant 15 minutes. Le culot est retiré et une quantité de 12 g de protéines SWP100 est ajoutée dans le surnageant dont le pH est à nouveau ajusté à 4. Une seconde centrifugation est effectuée et cette opération est répétée une troisième fois. Après la première centrifugation, le surnageant contient 2,9% de protéine soluble. Après trois centrifugations, la concentration en protéine soluble est de 3,6%. Le rapport massique SWP100/gomme arabique est égal à 1 et la concentration finale de SWP100 et de gomme arabique dans la phase aqueuse est de 2% poids/volume. La coacervation complexe est réalisée avec le surnageant concentré de SWP100 à pH 4 (100 mL contenant 3,6 g de protéine) et la gomme arabique comme polyélectrolyLe anionique (80 mL contenant 3,6 g de gomme arabique). La ccacervation est réalisée selon le mode opératoire décrit dans l'exemple 1. On obtient une dispersion de microcapsules contenant 73,5 % d'huile, de taille moyenne comprise entre 50 et 400 um. EXEMPLE 4: Coacervation complexe à partir du couple Supro 670/alginate Des capsules sont préparées selon le mode opératoire de l'exemple 1 à partir d'une solution de Supro 670 composée de 22,5 g d'eau et 2,5 g de protéine et une solution d'alginate composée de 150 g d'eau et 1,84 g d'alginate. Le pH de coacervation est égal à 3,8. On obtient des microcapsules en suspension qui contiennent 82 % d'huile et qui présentent une paroi fragile à l' aspect granuleux. La taille moyenne des microcapsules est comprise entre 50 et 400,um. EXEMPLE 5: Evaluation des protéines végétales comme polyélectrolyte anionique Une solution de protéine Supro 670 à 10% est ajustée à pH 7, et centrifugée une première fois à 4500 t/min pendant 25 minutes. Le culot est retiré et le surnageant composé de 43 mL d'eau et 2,57 g de protéine est utilisé pour la coacervation. g de MiglyolO 812 sont émulsionnés dans le surnageant de la solution de protéine Supro 670, puis une solution de chitosane 2622 composée de 120 mL d'eau et 1,5 g de chitosane à pH 1,32 est ajouté dans le milieu à 40 C. Le pH de coacervation est ajusté à 6. Le mode opératoire est ensuite identique à celui décrit pour l'exemple 1. On obtient une dispersion de microcapaules contenant 83 % d'huile, de taille moyenne comprise entre 50 et 400 um. REVENDICATIONS 1. Procédé de fabrication de microcapsules contenant un matériau à encapsuler, caractérisé en ce qu'on soumet un mélange d' au moins une protéine végétale solubilisée et d'un polyélectrolyte de charge opposée à ladite protéine à une coacervation complexe en milieu aqueux suivie éventuellement d'un durcissement, en présence dudit matériau à encapsuler. 2. Procédé de fabrication de microcapsules à base de protéines végétales selon la revendication l, caractérisé en ce qu'il comprend a) la solubilisation d' au moins une protéine végétale en milieu aqueux à un pH compris entre 2 et 7 et inférieur au pH isoélectrique de ladite protéine, b) la centrifugation de la solution obtenue en a), c) le mélange du surnageant obtenu en b) avec une solution aqueuse d'un polyélectrolyte de charge opposée à celle de la protéine végétale, d) la coacervation des polyélectrolytes sous la forme d'un complexe de polymères, et éventuellement le durcissement des capeules, en présence du matériau à encapsuler. 3. Procédé de fabrication de microcapsules à base de protéines végétales selon la revendication 2, caractérisé en ce que l'on augmente la quantité de protéines solubles par: e) addition d'une quantité de protéines végétales au surnageant obtenue à l'étape b), f) centrifugation du mélange et g) éventuellement répétition des étapes e) et f) plusieurs fois. S 4. Procédé de fabrication de microcapsules -à base de protéines végétales selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisé en ce que l'étape c) est mise en _uvre à un pH inférieur au point isoélectrique de la protéine végétale afin que ladite protéine soit utilisée dans l'étape d) de coacervation complexe comme polyélectrolyte cationique. 5. Procédé de fabrication de microcapaules à base de protéines végétales selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisé en ce que l'étape c) est mise en _uvre à un pH supérieur au pH isoélectrique de la protéine végétale afin que ladite protéine soit utilisée dans l'étape d) de coacervation complexe comme polyélectrolyte anionique. 6. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à , caractérisé en ce que les protéines végétales sont extraites de végétaux choisis dans le groupe comprenant lupin (genre Lupinus), soja (genre Glycine), pois (genre Pisum), pois chiche (Cicer), luzerne (Medicago), féverole (Vicia), lentille (Lens), haricot (Phascolus), colza (Brassica), tournesol (Helianthus) et des céréales comme le blé, le maïs, l'orge, le malt et l'avoine. 7. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 4 et 6, caractérisé en ce que le polyélectrolyte anionique est choisi dans le groupe comprenant l'alginate de sodium, la gomme arabique, les polyphospahtes, la carboxyméthylcellulose de sodium, le carraghénanne, la gomme xanDhane et les protéines végétales de pH supérieur au pHi. 8. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 3 et 5 à 6, caractérisé en ce qué le polyélectrolyte cationique est choisi dans le groupe comprenant des agents tensioactifs cationiques, des latex possédant un ammonium quaternaire, le chitosane et les protéines végétales de pH inférieur au pHi. 9. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 7, caractérisé en ce que le durcissement est réalisé par réticulation par un agent réticulant choisi dans le groupe comprenant les dialdéhydes tels que le glutaraldéhyde et les tanins tels que l'acide tannique. 10. Procédé selon la revendication 8, caractérisé en ce que lorsque le polyélectrolyte cationique est le chitosane, le durcissement est réalisé en utilisant l'anhydride acétique comme agent durcisseur. 11. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à , caractérisé en ce que l'on utilise un couple polycation/polyanion choisi dans le groupe comprenant les couples: SWP100/alginate, SP100/gomme arabique, chitosane/Supro@, Sugro@/alginate ou Supro@/gomme arabique. 12. Utilisation des capsules obtenues par le procédé selon l'une quelcouque des revendications 1 à 10 pour la fabrication de compositions utiles dans les domaines pharmaceutique, vétérinaire, cosmétique, agro- alimentaire, chimique et biomedical. 13. Compositions pharmaceutique, vétérinaire, cosmétique, agro-alimentaire ou chimique, caractérisées en ce qu'elles contiennent des microcapaules selon l'une quelconque des revendications 1 à 11, en association avec