Brevet FR2827605A1 — publié le 20030124

La présente invention se rapporte au virus respiratoire syncytial, et plus particulièrement à l'identification de nouveaux antigènes, utiles notamment pour le traitement thérapeutique et prophylactique des affections provoquées par ce virus. Le Virus Respiratoire Syncytial (VRS) est classé dans la famille des Paramyxoviridae, genre pneumovirus comportant un génome ARN non segmenté, de polarité négative, codant pour 11 protéines spécifiques. Le VRS est l'un des agents étiologiques les plus fréquemment rencontrés chez le nourrisson et chez les personnes âgées. Les bronchiolites sont souvent graves chez l'enfant et nécessitent l'hospitalisation. Actuellement il n'existe pas de moyens de prévention contre la maladie due au VRS. La première infection au VRS ne prévient pas contre la suivante. Le traitement des cas graves par antibiothérapie (Ribavirine) et/ou associé avec l'immunothérapie (immunoglobulines humains) ne peuvent pas atténuer l'aggravation de la maladie. Un anticorps monoclonal humanisé dirigé contre la protéine F du VRS dénommé palivizumab (Synagis TM) a également été développé. Toutefois, ce type de traitement reste encore très coûteux. Dans les années 60, les tentatives d'immunisation des enfants avec un vaccin VRS inactivé à la formaline (FI-VRS) avaient eu pour conséquence l'aggravation de la maladie au lieu de conférer une protection contre l'infection naturelle au VRS. Cette aggravation de la maladie a été caractérisée par une augmentation des neutrophiles polymorphonucléaires, des lymphocytes et des éosinophiles dans le sang et les poumons (Kim et al., Pediatric Res., 10 : 75-78,1976). Il a aussi été démontré chez la souris que FI-VRS induisait une réponse immune de type Th2 (T-helper 2), se traduisant notamment par une production importante d'IL-4, d'IL-5, d'IL-10 et d'IL-13, des cytokines Th2. Des études récentes ont permis de corréler cette immunopathologie observée suite à l'administration de FI-VRS avec une région précisément déterminée, un épitope CD4+ de séquence 185-193 de la protéine G (ICKRIPNKK, SEQ ID NO 10), qui s'avère primordiale pour obtenir une réponse en cytokines Th2 chez les souris (Varga et al., J. Immunol., 165 : 6487-6495,2000). La demande WO 87/04185 a proposé d'utiliser des protéines structurales du VRS en vue d'un vaccin, comme les protéines d'enveloppe appelées protéine F (protéine de fusion) ou protéine G (protéine d'attachement), une glycoprotéine de 22 Kd, une protéine de 9,5 Kd, ou la protéine majeure de capside (protéine N). La demande WO 89/02935 décrit les propriétés de protection de la protéine F entière du VRS, éventuellement modifiée sous forme monomérique ou déglycosylée. Dans la demande WO 95/27787, il a été montré que la protéine G du VRS peut être utile dans la préparation de produits destinés au traitement et/ou à la prévention d'affections provoquées par le VRS, sous-groupe A ou B. Des peptides structurellement homologues à la séquence 149-197 de la protéine G et dans laquelle aucun oligosaccharide n'est lié à une sérine, thréonine ou asparagine sont décrits dans la demande WO 97/46581. La demande WO 99/03987 quant à elle décrit des fragments de la protéine G du VRS, contenant des épitopes spécifiques, utilisés dans un vaccin contre l'infection au VRS. Toutefois, aucune de ces demandes n'a résolu le problème de la mise au point d'antigènes du VRS permettant d'obtenir à la fois une réponse immune suffisante et protectrice, une protection croisée VRS A et B et présentant le moins de risque possible d'immunopathologies associées à la production de cytokines de type Th2. De plus, pour des vaccins destinés aux nouveaux nés, il est aussi souhaitable que l'antigène utilisé présente une hypersensibilité immédiate (ou HSI) négative. L'hypersensibilité immédiate ou anaphylactique à IgE, de type 1 selon la classification de Gell et Coombs, regroupe les manifestations cliniques observées lors de certaines affections respiratoires, oculaires, cutanées, digestives,... On peut corréler une réponse HSI positive à une réponse de type Th2 avec production d'IL-5 et d'IgE ; ainsi, de manière à réduire le risque de pathologies associées à une vaccination contre le VRS, il est souhaitable de ne pas induire par le biais de la molécule vaccinale une réponse de type Th2. Il a aussi été constaté par les inventeurs que la production de peptides dérivés de la protéine G posaient de multiples problèmes, notamment au niveau de la formation des ponts disulfures, qui doivent se trouver dans la même configuration que celle de la protéine G native. En effet, l'appariement natif entre les ponts disulfures doit être respecté tout en conservant un bon rendement. Ainsi, l'objet de la présente invention est d'obtenir de nouveaux peptides dérivés de la protéine G répondant aux problèmes ci-dessus mentionnés, faciles à produire industriellement et permettant d'obtenir une réponse immune tout comme une protection suffisante, une protection croisée VRS A et B, et le moins de risque possible d'immunopathologies et présentant notamment une HSI négative. De manière surprenante, il a été mis en évidence qu'un peptide immunogène dérivé de la protéine G du VRS du sous-groupe A ou B comprenant au moins : - un premier peptide dérivé de la protéine G du VRS du sous-groupe A ou B comprenant au moins en position 173,176, 182 et 186 une cystéine, et dont l'extrémité C-terminale comprend au plus l'acide aminé en position 192 ; et - un deuxième peptide dérivé d'une protéine du VRS du sous-groupe A ou B, ledit deuxième peptide étant situé en aval dudit premier peptide, de manière à ce que le peptide immunogène produit présente un pont disulfure reliant les résidus 173 et 186 et un deuxième pont disulfure reliant les résidus 176 et 182 répond aux problèmes mentionnés ci-dessus. Ainsi, la présente invention a pour objet un peptide immunogène dérivé de la protéine G du VRS du sous-groupe A ou B comprenant au moins : - un premier peptide dérivé de la protéine G du VRS du sous-groupe A ou B comprenant au moins en position 173,176, 182 et 186 une cystéine, et dont l'extrémité C-terminale comprend au plus l'acide aminé en position 192 ; et - un deuxième peptide dérivé d'une protéine du VRS du sous-groupe A ou B, ledit deuxième peptide étant situé en aval dudit premier peptide, de manière à ce que le peptide immunogène produit présente un pont disulfure reliant les résidus 173 et 186 et un deuxième pont disulfure reliant les résidus 176 et 182. Par le terme peptide immunogène , on entend désigner tout peptide qui, lorsqu'il est associé à un porteur ou un adjuvant, est capable de générer ou accroître une réponse immunitaire dirigée contre le VRS. Préférentiellement, ce peptide immunogène permet également d'obtenir une protection croisée VRS A et B. Dans la présente invention, on entendra désigner par le terme peptide également les polypeptides. Par le terme "situé en aval dudit premier peptide", il faut comprendre que le deuxième peptide est situé en position 3'par rapport au premier peptide. Par peptide"comprenant au moins en position 173,176, 182 et 186 une cystéine, et dont l'extrémité C-terminale comprend au plus l'acide aminé en position 192", on entend désigner tout peptide présentant au moins 4 cystéines dans la même configuration que la protéine G native. Les numéros de position font référence à la protéine G native du VRS et ne signifient pas que le premier peptide selon l'invention comprend forcément tous les 192 acides aminés de la protéine native, mais que ce peptide est un peptide de séquence n-m, avec n = 1-172 et m = 187-192. Par la protéine G du VRS du sous-groupe A ou B on entend désigner la protéine d'enveloppe du VRS A ou B. De manière préférée, le peptide selon l'invention est synthétisé en un seul bloc, i. e. est en fait un seul peptide que l'on peut considérer comme l'assemblage d'un premier et deuxième peptide tel que défini ci-dessus. Ces deux peptides peuvent également être couplés. Le couplage est de préférence un couplage covalent, qui peut être réalisé par la voie chimique ou par des techniques d'ADN recombinant. Ce peptide peut notamment être obtenu par synthèse chimique peptidique classique, de préférence sans étapes de glycosylation, connue de l'homme du métier ou par voie recombinante, de préférence sans glycosylation. Les méthodes de préparation des peptides recombinants glycosylés ou de préférence non glycosylés sont aujourd'hui bien connues de l'homme de l'art et ne seront pas développées dans la présente description. Parmi les cellules utilisables pour la production de ces protéines recombinantes, on peut notamment citer les cellules bactériennes (Olins P. O. et Lee S. C., Curr. Op. Biotechnology, 4 : 520-525,1993), et plus particulièrement E. coli. La présente invention concerne encore un peptide immunogène dérivé de la protéine G du VRS du sous-groupe A ou B de séquence présentant après alignement optimal au moins 80 % d'homologie, de préférence 85 %, 90 %, 95 % et 99 %, avec la séquence peptidique du peptide selon l'invention. Par séquence d'acides aminés présentant une homologie d'au moins 80 % après alignement optimal avec une séquence d'acide nucléique ou d'acides aminés déterminée, on entend désigner une séquence qui après alignement optimal avec ladite séquence déterminée comprend un pourcentage d'identité d'au moins 80 % avec ladite séquence déterminée. Par pourcentage d'identité entre deux séquences d'acides aminés au sens de la présente invention, on entend désigner un pourcentage de résidus d'acides aminés identiques entre les deux séquences à comparer, obtenu après le meilleur alignement, ce pourcentage étant purement statistique et les différences entre les deux séquences étant réparties au hasard et sur toute leur longueur. Les comparaisons de séquences entre deux séquences d'acides aminés sont traditionnellement réalisées en comparant ces séquences après les avoir alignées de manière optimale, ladite comparaison étant réalisée par segment ou par fenêtre de comparaison pour identifier et comparer les régions locales de similarité de séquence. L'alignement optimal des séquences pour la comparaison peut être réalisé, outre manuellement, au moyen de l'algorithme d'homologie locale de Smith et Waterman (1981) [Ad. App. Math. 2 : 482], au moyen de l'algorithme d'homologie locale de Neddleman et Wunsch (1970) [J. Mol. Biol. 48 : 443], au moyen de la méthode de recherche de similarité de Pearson et Lipman (1988) [Proc. Natl. Acad. Sci. USA 85 : 2444], au moyen de logiciels informatiques utilisant ces algorithmes (GAP, BESTFIT, FASTA et TFASTA dans le Wisconsin Genetics Software Package, Genetics Computer Group, 575 Science Dr., Madison, WI, ou encore par les logiciels de comparaison BLAST N ou BLAST P). Le pourcentage d'identité entre deux séquences d'acides aminés est déterminé en comparant ces deux séquences alignées de manière optimale par fenêtre de comparaison dans laquelle la région de la séquence d'acide nucléique ou d'acides aminés à comparer peut comprendre des additions ou des délétions par rapport à la séquence de référence pour un alignement optimal entre ces deux séquences. Le pourcentage d'identité est calculé en déterminant le nombre de positions identiques pour lesquelles le résidu d'acide aminé est identique entre les deux séquences, en divisant ce nombre de positions identiques par le nombre total de positions dans la fenêtre de comparaison et en multipliant le résultat obtenu par 100 pour obtenir le pourcentage d'identité entre ces deux séquences. Par exemple, on pourra utiliser le programme BLAST, BLAST 2 sequences , disponible sur le site http ://www. ncbi. nlm. nih. gov/gorf/bl2. html, les paramètres utilisés étant ceux donnés par défaut (en particulier pour les paramètres open gap penaltie : 5, et extension gap penaltie : 2 ; la matrice choisie étant par exemple la matrice BLOSUM 62 proposée par le programme), le pourcentage d'identité entre les deux séquences à comparer étant calculé directement par le programme. Parmi lesdites séquences présentant une homologie d'au moins 80 %, on préfère les séquences de peptides capables d'induire une réponse immunitaire dirigée contre le VRS, telle que l'induction d'une réponse immunitaire mesurée au moyen des techniques standards décrites dans les exemples ci-après. Dans un mode de réalisation préféré de l'invention, l'extrémité C-terminale dudit premier peptide comprend au plus l'acide aminé en position 190. Dans un autre mode de réalisation préféré de l'invention, ledit premier peptide présente une séquence choisie parmi la séquence de la protéine G du VRS de sous groupe A ou B 130-190,130-192, 140-190,140-192, 145-190,145-192, 148-190,148- 192,130-188, 140-188,145-188 ou 148-188, et préférentiellement la séquence 140-190. Dans un autre mode de réalisation préféré de l'invention, ledit deuxième peptide contient au moins un épitope B du VRS A ou B. Ce peptide peut notamment être dérivé de la protéine G ou F du VRS. Ainsi, ledit deuxième peptide peut, dans un mode de réalisation préféré de l'invention présenter une séquence choisie parmi la séquence 144-158,144-159 de la protéine G du VRS et parmi les peptides neutralisants décrits de la protéine F (décrit par Trudel et al., J. Gen. Virol., 68 : 2273-2280,1987 ; Trudel et al., Can. J. Microbiol. 33 : 933-938, 1987 ; Lopez et al., J. Virol., 64 : 927-930,1990 et Scopes et al., J. Gen. Virol., 71 : 53-59,1990) tels que les peptides de séquence 221-237,274-287, 262-268 et 483-488 de la protéine F du VRS. Dans un mode de réalisation préféré, ledit deuxième peptide présente la séquence 144-158 ou 144-159 de la protéine G du VRS. De façon particulièrement préférée, ledit peptide immunogène dérivé de la protéine G du VRS du sous-groupe A ou B présente un HSI négatif. Comme exemple de peptides préférés selon l'invention, on peut citer les peptides immunogènes constitués d'un premier peptide présentant une séquence choisie parmi la séquence de la protéine G du VRS de sous groupe A ou B 140-190 ou 140-192 et d'un deuxième peptide présentant une séquence choisie parmi la séquence 144-158 ou 144- 159 de la protéine G du VRS. Ainsi, la présente invention a encore pour objet les peptides de séquences SEQ ID NO 1 (dénommé G20a), SEQ ID NO 2 (dénommé G20aP) et SEQ ID NO 3 (dénommé G23a). L'invention concerne également les séquences d'acide nucléique codant pour un peptide selon l'invention, tels que ceux décrits ci-dessus. L'invention a encore pour objet une composition pharmaceutique caractérisée en ce qu'elle comprend dans un milieu pharmaceutiquement acceptable au moins un peptide selon l'invention ou une séquence d'acide nucléique codant pour un tel peptide. Ces compositions selon l'invention peuvent en outre contenir au moins une protéine porteuse et/ou un adjuvant. La protéine porteuse peut être avantageusement choisie parmi la protéine TT (tetanus toxoïde), la protéine DT (toxoïde diphtérique), la protéine de liaison à la sérumalbumine humaine du Streptocoque et ses fragments, la toxine cholérique (CT) ou sa sous unité B (CTB), l'entérotoxine d'E. coli (LT) ou sa sous unité B (LTB) et les extraits de protéines membranaires bactériennes telles que les OMPC de Neisseria meningitidis (Vella et al., Infect. Immun., 60 : 4977-4983, 1992), TraT d'Escherichia coli (Croft et al., J. Immunol., 146 : 793-798, 1991) ou PorB de Neisseria meningitidis (Fusco et al., J. Infect. Dis., 175 : 364-372, 1997) ou toute autre protéine présentant un épitope Th. Une des protéines porteuses préférées consiste en une OmpA d'une bactérie du genre Klebsiella, protéine majeure de la membrane externe baptisée P40, présentant une activité de protéine porteuse, par voie systémique, pour des antigènes sous-unitaires peptidiques (WO 95/27787 et WO 96/14415 ; Haeuw et al., Eur. J. Biochem., 255 : 446- 454,1998 ; Plotnicky-Gilquin et al., J. Virol., 73 : 5637-5645,1999). La séquence d'acide aminé de la protéine P40 est par exemple identifiée dans la liste des séquences du document WO 99/49892 par la séquence SEQ ID NO 1. Un autre porteur particulièrement préféré consiste en des dérivés atoxiques de la protéine DT (toxoïde diphtérique), dans lesquels au moins un résidu cystéine a été supprimé. Comme exemple de tel porteur, on peut citer les protéines de séquences SEQ ID NO 4 (dénommé DTa), SEQ ID NO 5 (dénommé DTb), et SEQ ID NO 6 (dénommé DTaDTb). L'adjuvant peut notamment être choisi parmi le MPL-A ( MonoPhosphoryl Lipid A ), le MF-59, le Quil-A (adjuvant dérivé de saponine), l'ISCOM ( ImmunoStimulating COMplex ), le Diméthyl Dioctadécyl Ammonium sous forme de bromure (DDAB) ou de chlorure (DDAC), l'alum (hydroxyde d'aluminium), l'adjuphos, les CpG (oligodésoxynucléotides contenant un motif spécifique centré sur un dinucléotide CpG), la Leif (antigène protéique dérivé de Leishmania capable de stimuler les cellules PBMC et présentatrices d'antigène, et de produire une réaction cytokine de type Th-1), la CT (Toxine Cholérique), la LT ( heat Labil Toxin ) et les versions détoxifiées de la CT ou la LT et parmi tout mélange entre ces différents adjuvants. Le peptide selon l'invention peut être associé, notamment par couplage, à la protéine porteuse. Le couplage est de préférence un couplage covalent, qui peut être réalisé par la voie chimique ou par des techniques d'ADN recombinant. Dans un mode de réalisation particulier de l'invention, il est introduit un ou plusieurs éléments de liaison dans le peptide selon l'invention et/ou dans ledit porteur pour faciliter le couplage chimique, de préférence, ledit élément de liaison introduit est un acide aminé. Selon l'invention, il est possible d'introduire un ou plusieurs éléments de liaison, notamment des acides aminés pour faciliter les réactions de couplage entre le peptide selon l'invention et le porteur. Le couplage covalent entre le peptide selon l'invention et ledit porteur peut être réalisé à l'extrémité N-ou C-terminale dudit peptide. Les réactifs bifonctionnels permettant ce couplage seront déterminés en fonction de l'extrémité dudit peptide choisi pour effectuer le couplage et de la nature dudit porteur à coupler. Dans un autre mode de réalisation particulier, le couplage entre le peptide selon l'invention et ledit porteur est réalisé par recombinaison génétique, lorsque ledit porteur est de nature peptidique. Les conjugués issus d'un couplage entre le peptide selon l'invention et ledit porteur peuvent être préparés par recombinaison génétique. La protéine chimérique ou hybride (le conjugué) peut être produite par des techniques d'ADN recombinant par insertion ou addition à la séquence d'ADN codant pour ledit peptide selon l'invention, d'une séquence codant pour ledit porteur de nature protéique. Les procédés de synthèse des molécules hybrides englobent les méthodes utilisées en génie génétique pour construire des polynucléotides hybrides codant pour les séquences polypeptidiques recherchées. On pourra, par exemple, se référer avantageusement à la technique d'obtention de gènes codant pour des protéines de fusion décrites par D. V. Goeddel (Gene expression technology, Methods in Enzymology, vol. 185,3-187, 1990). Comme exemple de conjugués, on peut citer les conjugués des peptides selon l'invention avec des dérivés de la protéine DT (toxoïde diphtérique), dans lesquels au moins un résidu cystéine a été supprimé. De tels conjugués, qui font aussi parti de l'invention, sont notamment les peptides de séquences SEQ ID NO 7 (dénommé G20aDTa), SEQ ID NO 8 (dénommé G20a-DTb) et SEQ ID NO 9 (dénommé G20a-DTaDTb). Selon l'un des aspects de l'invention, le peptide selon l'invention est conjugué à la protéine porteuse par une protéine de liaison ; cette protéine de liaison peut notamment être choisie parmi un récepteur de l'albumine sérique de mammifère et les récepteurs présents à la surface des cellules mucosales. L'invention a également pour objet la composition selon l'invention, caractérisée en ce que ladite composition pharmaceutique comprend en outre au moins un deuxième antigène, immunogène ou haptène du VRS et/ou un antigène, immunogène ou haptène dérivé de micro-organisme responsable de pathologies des voies aériennes choisi parmi les parainfluenza virus (PIV 1,2, 3 et 4), l'influenza virus (A et B), les hantavirus, les streptocoques, les pneumocoques, haemophilus influenza type b, les rhinovirus, les coronavirus et les méningocoques. Par immunogène, antigène ou haptène , on entend désigner en particulier tout composé exprimé par un agent infectieux, ou un de leurs analogues structuraux, qui seul ou en association avec un adjuvant ou porteur est capable d'induire une réponse immunitaire spécifique dudit agent infectieux. On entend également désigner par"immunogène, antigène ou haptène" dans la présente description un composé présentant une analogie structurale avec ledit antigène ou haptène capable d'induire une réponse immunologique dirigée contre ledit antigène ou haptène dans un organisme préalablement immunisé avec ledit composé analogue. Dans un mode de réalisation encore plus préféré de l'invention ledit deuxième antigène du VRS comprend au moins un fragment de la protéine G du virus respiratoire syncytial, ledit fragment comprenant un épitope T ou étant uniquement composé dudit épitope T. Dans un autre mode de réalisation préféré de l'invention ledit deuxième antigène du VRS comprend au moins un fragment de la protéine F du virus respiratoire syncytial, ledit fragment comprenant un épitope T ou étant uniquement composé dudit épitope T. Au sens de la présente invention, le milieu pharmaceutiquement acceptable est le milieu dans lequel les composés de l'invention sont administrés, préférentiellement un milieu injectable chez l'homme. Il peut être constitué d'eau, d'une solution aqueuse saline ou d'une solution aqueuse à base de dextrose et/ou de glycérol. L'invention comprend également une composition selon l'invention, caractérisée en ce que ladite composition pharmaceutique est véhiculée sous une forme permettant d'améliorer sa stabilité et/ou son immunogénicité ; ainsi, elle peut être véhiculée sous forme de liposomes, virosomes, nanosphères, microsphères ou microcapsules. L'invention a également pour objet des anticorps, monoclonaux ou polyclonaux, dirigés contre les peptides selon l'invention. Les anticorps monoclonaux sont, de préférence, humanisés et produits par la voie recombinante. Selon un autre aspect de l'invention, ils sont obtenus par la méthode de librairie de phages. De préférence, l'anticorps monoclonal, polyclonal ou l'un de leurs fragments, est caractérisé en ce qu'il est capable de se fixer spécifiquement sur un épitope ou déterminant des peptides non glycosylés selon l'invention. Les anticorps monoclonaux pourront avantageusement être préparés à partir d'hybridomes selon la technique décrite par Kohler et Milstein en 1975 (Nature, 256 : 495-497,1975). Les anticorps polyclonaux pourront être préparés, par exemple, par immunisation d'un animal, en particulier une souris ou un lapin, avec le peptide selon l'invention associé à un adjuvant de la réponse immunitaire, puis purification des anticorps spécifiques contenus dans le sérum des animaux immunisés sur une colonne d'affinité sur laquelle a préalablement été fixé ledit peptide ayant servi d'antigène. Les anticorps de l'invention comprennent également tout fragment dudit anticorps monoclonal capable de se fixer sur un épitope du peptide selon l'invention sur lequel se fixe l'anticorps monoclonal ou polyclonal dont ledit fragment est issu. Des exemples de tels fragments incluent en particulier des anticorps monoclonaux simple chaîne ou des fragments monovalents Fab ou Fab'et des fragments divalents tels que F (ab') 2, qui possèdent la même spécificité de fixation que l'anticorps monoclonal ou polyclonal dont ils sont issus. Un fragment selon l'invention pourra également être un fragment Fv simple chaîne produit par des méthodes connues de l'homme de l'art et telles que décrites par exemple par Skerra et al. (Science, 240 : 1038-1041,1988) et King et al. (Biochemical J., 290 : 723-729,1991). Selon la présente invention, des fragments d'anticorps monoclonaux ou polyclonaux de l'invention peuvent être obtenus à partir des anticorps monoclonaux ou polyclonaux tels que décrits précédemment par des méthodes telles que la digestion par des enzymes, comme la pepsine ou la papaïne et/ou par clivage des ponts disulfures par réduction chimique. D'une autre manière, les fragments d'anticorps monoclonaux ou polyclonaux compris dans la présente invention peuvent être synthétisés par des synthétiseurs automatiques de peptides tels que ceux fournis par la société Applied Biosystems, etc., ou peuvent être préparés manuellement en utilisant des techniques connues de l'homme de l'art et telles que décrites par exemple par Geysen et al. (J. Immunol. Methods, 102 : 259-274,1978). En général, pour la préparation d'anticorps monoclonaux, polyclonaux ou leurs fragments, on pourra se référer aux techniques qui sont en particulier décrites dans le manuel Antibodies (Harlow et al., Antibodies : A Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Publications pp. 726,1988) ou à la technique de préparation à partir d'hybridomes décrite par Kohler et Milstein en 1975. Les anticorps monoclonaux humanisés selon l'invention ou leurs fragments peuvent être préparés par des techniques connues de l'homme de l'art (Carter et al., PNAS 89 : 4285-4289,1992 ; Mountain et al., Biotechnol. Genet. Eng. Rev., 10 : 1-142, 1992). De tels anticorps monoclonaux humanisés selon l'invention sont préférés pour leur utilisation dans des méthodes thérapeutiques. Les anticorps de l'invention, ou leurs fragments pourront également être marqués par un marquage de type enzymatique, fluorescent ou radioactif. Les anticorps monoclonaux marqués selon l'invention ou leurs fragments incluent par exemple des anticorps dits immunoconjugués qui peuvent être conjugués par exemple avec des enzymes telles que la péroxydase, la phosphatase alkaline, la P-D- galactosidase, la glucose oxydase, la glucose amylase, l'anhydrase carbonique, l'acétylcholinestérase, le lysozyme, la malate déhydrogénase ou la glucose-6 phosphate déhydrogénase ou par une molécule comme la biotine, la digoxigénine ou la 5-bromodésoxyuridine. Des marqueurs fluorescents peuvent être également conjugués aux anticorps monoclonaux ou leurs fragments de l'invention et incluent notamment la fluorescéine et ses dérivés, la rhodamine et ses dérivés, la GFP (GFP pour Green Fluorescent Protein ), le dansyl, l'umbelliférone, etc.. Dans de tels conjugués, les anticorps monoclonaux de l'invention ou leurs fragments peuvent être préparés par des méthodes connues de l'homme de l'art. Ils peuvent être couplés aux enzymes ou aux marqueurs fluorescents directement ou par l'intermédiaire d'un groupe espaceur ou d'un groupe de liaisons tel qu'un polyaldéhyde, comme le glutaraldéhyde, l'acide éthylènediaminetétraacétique (EDTA), l'acide diéthylènetriaminepentaacétique (DPTA), ou en présence d'agents de couplage tels que le périodate, etc.. Les conjugués comportant des marqueurs de type fluoréscéine peuvent être préparés par réaction avec un isothiocyanate. D'autres conjugués peuvent inclure également des marqueurs chimioluminescents tels que le luminol et les dioxétanes ou des marqueurs bioluminescents tels que la luciférase et la luciférine. Parmi les marqueurs pouvant être fixés sur l'anticorps monoclonal ou un de ses fragments selon l'invention, on préfère également les marqueurs radioactifs tels que 14C, "CI,"Co,"Co,"Cr,'"Eu,"Te,'H,'"I,'"I,"P,"PS,"SE et 99mTc qui peuvent être détectés par des moyens connus tels que par exemple le compteur gamma ou à scintillations ou par autoradiographie. Les peptides et/ou les anticorps selon l'invention, ou une séquence d'acide nucléique codant pour un tel peptide, peuvent, selon un mode de mise en oeuvre de l'invention, entrer dans la composition d'un kit de diagnostic. Les peptides et les anticorps selon l'invention peuvent être utilisés à titre de médicament, et plus particulièrement pour la préparation d'une composition destinée au traitement préventif ou curatif des affections provoquées par le VRS, sous-groupe A ou B. Ainsi, l'invention concerne encore l'utilisation d'un peptide selon l'invention tel que défini ci-dessus, ou d'une séquence d'acide nucléique codant pour un tel peptide, pour la préparation d'une composition pharmaceutique, préférentiellement d'un vaccin, destiné au traitement prophylactique ou thérapeutique des affections provoquées par le VRS, sous groupe A ou B présentant une réponse immunogénique, une protection croisée VRS A et B, une HSI négative et n'induisant pas d'immunopathologies. L'invention a encore pour objet l'utilisation d'un peptide selon l'invention tel que défini ci-dessus, ou d'une séquence d'acide nucléique codant pour un tel peptide, pour la préparation d'une composition pharmaceutique destinée à générer ou accroître une réponse immunitaire contre le VRS et n'induisant pas d'immunopathologies. Les légendes des figures et exemples qui suivent sont destinés à illustrer l'invention sans aucunement en limiter la portée. Dans ces exemples, on se référera aux figures suivantes : Figures 1 A et AB : Titre anti-VRS avant et après une immunisation chez des souris naïves (exprimé en logo). Figures 2A et 2B : Titre anti-VRS avant et après une immunisation chez des souris séropositives vis-à-vis de VRS-A (exprimé en logo). Figures 3A et 3B : Titre anti-VRS avant et après une immunisation chez des souris séropositives vis-à-vis de VRS-B (exprimé en logo). Figures 4A et 4B : protection contre un challenge VRS-A chez des souris immunisées par G23 ou G20. Figures 5A et 5B : Mesure d'infiltrations de cellules de type granuleux (suivies par le marqueur RB6-8C5) et mesure des cytokines de type Th2 (IL-10 et IL-5). Exemple 1 : Production du peptide G20a A titre d'exemple, le gène codant pour G20a, obtenu par PCR, a été cloné dans un vecteur d'expression dont le promoteur est basé sur l'opéron Tryptophan (Trp). Il en résulte le vecteur nommé pTEXG20a dont l'ADN de l'insert a été vérifié par séquençage ADN. Le vecteur a été transformé dans une bactérie Escherishia coli K12 nommée ICONES. A. Fermentation : dans un fermenteur de 30 1 (CHEMAP CMF400) contenant 18 1 de milieu minimum de culture (g/1) (KH2P04, 6/K2HP04, 4 Na3 citrate 2H2O, 9/ Extrait de levure 1/ (NH4) 2S04, 5/CaCl2, 0, 3/MgS04, 7H20, 2 Glycérol 100) et les Oligo-éléments (1 ml/l) et de l'antimousse Struktol (0,4 mol/1) supplémenté par une solution de Tétracycline et du Tryptophane à concentration finale respectivement (0,008 g/1) et (0,3 g/1), on inocule 1400 ml du même milieu issu d'une préculture de E. coli recombinante décrite ci-dessus dans un fermenteur de 2 litres. En culture type batch, ces paramètres physico-chimiques sont maintenus constants : Température à 37 C, pH à 7 régulé avec NILOH, Agitation 500-1 000 tr/mn pour maintenir le taux d'02 dissous à 30 %. Lorsque la densité optique (DO 620 nm) du milieu de culture atteint environ la valeur de 50, on peut alors induire l'expression de la protéine recombinante en ajoutant 2 ml/litre de culture d'une solution d'acide 3 indolacrylique (IAA) à 12,5 g/l. Quelques heures après, la fermentation est arrêtée par refroidissement à 4 C après épuisement de substrat carboné (mesuré par un dosage enzymatique du glycérol dans le milieu de culture). La biomasse bactérienne est obtenue par centrifugation continue du milieu (14 000 tr/mn, débit 100 l/h). Le rendement en biomasse est d'environ 38 g de cellules sèches/l. B. Extraction : la biomasse (environ 500 g de cellules sèches) est reprise dans 10 1 de tampon TST (Tris HCI 25 mM pH 8, MgCIs 6H2O 5 mM, EDTA 2mM). La suspension bactérienne est broyée au Manton-Gaulin (3 cycles à 560 bar). La protéine recombinante G20a étant majoritairement soluble, la purification peut être réalisée directement à partir de la suspension broyée. On peut réaliser par exemple la capture de G20a par chromatographie d'échange d'ions en lit expansé (Streamline, Pharmacia) Deux ou trois étapes de chromatographie supplémentaires (échange d'ions et exclusion) sont nécessaires afin d'éliminer les contaminants ADN et protéiques de la cellule hôte. Les protéines purifiées sont analysées sur gel SDS-PAGE dans des conditions réduites, sur l'appareil MINI PROTEAN II SYSTEM (BioRads). Elles peuvent être visualisées avec du Coomassie brilliant blue R250. Exemple 2 : Comparaison de la production du peptide G20a par rapport à la production du peptide G7a A. Synthèse et caractérisation du peptide G7a (33 acides aminés) Le peptide G7a (dénommé également"G7") est un fragment de la protéine G du VRS-A (158-190) de 33 acides aminés. Il comporte 4 cystéines en position 173,176, 182 et 186, capables de former 2 ponts disulfures. La séquence du peptide G7 est la suivante (SEQIDN 11) : KiPNNDFHFEVFKFVPCi73SICi76SNNPTC, 82WAICis6KRIPi9o. Le peptide est obtenu à l'aide d'un synthétiseur automatique de peptide en phase solide (SPPS) en chimie Fmoc/tBu en partant du côté C vers le côté N-terminal à l'échelle de 0,25 mmole à partir des acides aminés protégés suivants : Fmoc-L-Ala, Fmoc-L-Arg (Pmc), Fmoc-L-Asn (Trt), Fmoc-L-Asp (OtBu), Fmoc-L-Cys (Trt), Fmoc-LGlu (OtBu), Fmoc-L-His (Trt), Fmoc-L-Ile, Fmoc-L-Lys (Boc), Fmoc-L-Phe, Fmoc-LPro, Fmoc-L-Ser (tBu), Fmoc-L-Thr (tBu), Fmoc-L-Trp, Fmoc-L-Val, Fmoc-L-ProRésine). 1,750 mg de peptide-résine sont obtenus en fin de synthèse. La moitié de l'échantillon (890 mg) est clivé dans une solution contenant de l'acide trifluoroacétique ainsi qu'un scavenger (1 % de TIS) puis lyophilisé avec un rendement de 50 % de peptide réduit non purifié. 81 mg de peptide brut réduit sont solubilisés dans 64 ml d'eau mélangés avec 16 ml de DMSO (solvant oxydant) à température ambiante pendant 5 jours. L'oxydation du mélange brut aboutit à la formation de 2 formes oxydées numérotées oxl et ox2 d'après l'ordre d'élution en HPLC ("High Pressure Liqui Chromatography") et distinctes de la forme réduite par HPLC. La nature oxydée des 2 formes est confirmée par spectrométrie de masse (4 RSH = > 2 RS-S-R moins 4 unités de masse atomique ; masse du peptide réduit : 3842,43 Da ; masse du peptide oxydé : 3838,43 Da). Les 2 pics principaux observés par RP-HPLC (Reverse Phase-High Pressure > Liquid Chromatography) dans le mélange complexe ainsi obtenu sont isolés et analysés par spectrométrie de masses (ES-MS,"ElectronSpray-Mass Spectrometry"). Les masses mesurées obtenues sont compatibles avec des masses théoriques correspondant à des formes oxydées du peptide G7a (G7oxl : 1,3 mg soit 1,6 % de rendement) ; RP-HPLC (RT) : 13,70 min. ; ES-MS : masse calculée = 3838,43 Da/Masse mesurée : 3838,27 Da 0. 10 et G7ox2 : 1,2 mg soit 1,5 % de rendement) ; RP-HPLC (RT) : 15,00 min ; ES-MS : masse calculée = 3838,43 Da/Masse mesurée : 3838,27 Da 0. 10). Quatre cystéines (numérotées de 1 à 4 du côté N-vers le côté C-teminal) dans une protéine peuvent s'apparier selon 3 isomères théoriques : 1-2/3-4,1-3/2-4 et 1-4/2- 3. Des méthodes chimiques d'obtention et de caractérisation des 3 isomères théoriques de l'hexadécapeptide G4a, correspondant à la région centrale 172-187 de la protéine G du VRS-A ont été décrites (Beck et al., J. Pept. Res., 55 : 24, 2000). L'appariement natif de la protéine G est la forme 1-4/2-3 pour le VRS bovin (Langedijk et al., J. Gen. Virol., 77 : 1249, 1996) et pour le VRS humain (Beck et al., J. Pept. Res., 55 : 24, 2000). L'appariement des 4 cystéines des 2 formes oxydées du peptide G7a est étudié par LCMS ("Liquid Chromatography-Mass Spectrometry") et par microséquençage de fragments obtenus suite à une coupure à la thermolysine. L'interprétation des fragments obtenus est décrite dans le tableau 1 ci-après. N x 0 1 5 zs cl G 'Q) - t-t z 0... Q) 0... Q) c- (P dz Q) V1 ; dz Q) *-t-* & .. E- Masse Masse Pic UV Interprétatioin Attribution mesurée théorique 4 247,5 (MH+) 246,3 FE 280,5 (MH+) 279,3 FN 379,6 (MH+) 378, 3 VFN 6 849,6 (MH+) 848,9 ICSNNPTC # 2-3 7 276,5 (MH+) 275,3 WA 12 1048,23 ~ 0,65 1841,1 ICS ICKRIP # 2-4 1373,2 1373,6 ICSNNP ICKRIP 2-4 # 1475,8 1474,8 ICSNNPT ICKRIP 2-4 # 14 1279, 28~0. 46 1278,6 # 1-4 FVPCS ICKRIP 16 1035,01 ~ 0,21 1035,2 ICSNNPTCW # 2-3 17 1106,41 ~ 0,83 1106,3 ICSNNPTCWA # 2-3 # KPNNDFHFEVFNFVPCSICSNNPTCWAICKRIP 1-4/2-3 Conclusion G7a-ox2 = G7a 1-4/2-3 + G7a 1-3/2-4 KPNNDFHFEVFNFVPCSICSNNPTCWAICKRIP 1-3/2-4 # Il apparaît que le peptide G7ox2 est un mélange inséparable par HPLC des peptides G7 (1-4/2-3) et G7 (1-3/2-4) en proportion inconnue. Le rendement de la réaction et de la purification est très faible (1,5 %). B. Synthèse et caractérisation du peptide G20a (69 acides aminés) Le peptide G20a est un fragment de la protéine G du VRS-A (140-190)- (144- 158) de 69 acides aminés. Il comporte 4 cystéines capables de former 2 ponts disulfures. La séquence du peptide G20a est la suivante (SEQ ID NO 1) : : MEFQ140 TQPSKPTTKQRQNKPPNKPNNDFHFEVFNFVPC173SIC176SNNPTC WAIC 186KRIPt9oSi44KPTTKQRQNKPPNKi5. Le peptide G20a est obtenu par synthèse automatique en phase solide en chimie Fmoc/tBu à l'échelle de 0,25 mmole à partir d'une résine hydroxyméthylphénoxyméthyle (HMP) préchargée avec une Lys (Boc) (0,70 mmole/g) et des Fmocacides aminés protégés au niveau des chaînes latérales par les groupes suivants : trityl (Trt) pour Asn, Gln et His ; tert-butyl éther (tBu) pour Ser et Thr ; tert-butyl ester (OtBu) pour Asp et Glu, tert-butyloxycarbonyl (Boc) pour Lys et Trp et 2,2, 5,7, 8pentaméthylchromane-6 sulfonyl (Pmc) pour Arg. Les cystéines utilisées possédaient les groupes protecteurs orthogonaux suivants : Trt pour les Cysl76 et 182 d'une part et acétamidométhyl (Acm) pour les Cys 173 et 186. A la fin de la synthèse, 1 000 mg des 2 500 mg de peptide-résine ont été clivés par un mélange TFA/EDT/thioanisol/ phénol/TIS/HzO : 20 ml/0, 25 ml/1 ml/1, 5 g/0, 22 ml/1ml. Après 3 heures de réaction sous agitation à température ambiante, le mélange est filtré pour éliminer la résine et le peptide brut est précipité grâce à l'addition de diéthyl éther froid. Le précipité est solubilisé dans un mélange H2O / CH3CN / TFA : 80 / 20 / 0, 1 : v/v/v puis lyophilisé. Avant oxydation, le peptide brut est purifié par RP-HPLC à l'aide d'un gradient eau 1 acétonitrile et analysé par RP-HPLC (pureté RP-HPLC > 75 % ; rendement : 38 %) et ES-MS (masse calculée : 8186,42 Da masse mesurée : 8186,40). Formation des ponts disulfures en 2 étapes. Pour former le pont entre les Cys 176 et 182, non protégées, le peptide lyophilisé est solubilisé (1 mg/ml) dans un mélange DMSO-H2O à 20 % (v/v) et agité à température ambiante pendant 4 jours (Tarn et al, J. Am. Chem. Soc., 113 : 6657,1991). En fin de réaction pour éliminer le DMSO, le peptide est purifié par RP-HPLC dans les mêmes conditions que le peptide réduit. Les fractions correspondant au pic principal sont collectées et lyophilisées. Un aliquot est soumis à une analyse par ES-MS pour vérifier que le premier pont disulfure a bien été formé. Le second pont, entre les Cys (Acm) 173 et 186 est obtenu par oxydation à (Buku et al., Int. J. Peptide. Res., 33,86, 1989 et Annis et al., Meth. Enzymol., 289,198, 1997). Le peptide est solubilisé (1 mg/ml) dans un mélange acide acétique/eau à 80 % (v/v) and 10 % d'HCl 1 N sont ajoutés. La solution est saturée par de l'azote. Puis 10 équivalents d'iode solubilisé dans un mélange d'acide acétique/eau à 80 % (v/v) sont ajoutés rapidement et le milieu est agité pendant 5 heures à température ambiante. L'excès d'iode est réduit par l'addition goutte à goutte d'une solution aqueuse d'acide ascorbique jusqu'à ce que la couleur caractéristique de l'iode disparaisse. Le peptide oxydé brut est purifié par RP-HPLC, lyophilisé et analysé par RP-HPLC et ES-MS. Formation des ponts disulfures en 1 étape. Un protocole d'obtention en une étape a également par oxydation directe à l'iode sur le peptide réduit permettant également d'obtenir le peptide d'intérêt. Le rendement passe alors de 22 à 44 % (pureté RP-HPLC > 90 % ; masse calculée : 8140,22 Da/masse mesurée : 8040, 30 Da). L'appariement des ponts disulfures est étudié par LC-MS et par microséquençage des fragments obtenus suite à une coupure du peptide à la thermolysine. Les fragments obtenus et leur interprétation sont décrits dans le tableau 2 ci-après. 8 CD : 8 -C : : 1 dz 11) e . Ln 0 E 1-. 11) zs u ? ho 11) 0.. Masse Masse Pic UV Interprétation Attribution mesurée théorique 29 1691,52 : t 0, 39 1692, 1 1-4 FVPCSI ICKRIPSKP 30 1591 ~ 0,27 1591,0 # FVPCS ICKRIPSKP 34 1035, 490, 66 1035,2 ICSNNPTCW 1 35 1106,27 0, 33 1106,3 ICSNNPTCWA 2-3 Conclusion : # 1-4/2-3 ---FVPCSICSNNPTCWAICKRIPSKPT--G20a 1-4/2-3 Il apparaît de façon surprenante que le protocole décrit ci-dessus permet d'obtenir uniquement la forme native G20a (1-4/2-3). Ainsi, le peptide G20a (69 aa) a été plus facile à produire que le peptide G7a (33 aa) malgré le fait d'additionner 36 aa de plus étape par étape. Le protocole en 2 étapes décrit pour le peptide G20a appliqué au peptide G7a (2 % de rendement) confirmant les résultats reportés dans l'exemple 1. L'explication proposée a posteriori, qui n'est qu'une hypothèse et se veut non limitative, est qu'il est nécessaire d'avoir plus de 4 acides aminés du côté C-terminal de la Cys 186 pour que l'appariement natif entre les Cys 173 et 186 d'une part et les Cys 176 et 182 d'autre part, puisse se faire avec un bon rendement et former un motif structural connu sous le nom de cystine noose présent dans la protéine G native (Doreleijers et al., Biochemistry, 35 : 14684,1996) et qui correspond à un épitope immunodominant de la protéine G du VRS (Plotnicky et al., J. Virol., 73 : 5637,1999). Cet exemple démontre donc que l'addition d'un fragment peptidique de séquence non sauvage du côté C-terminal de la région conservée des 2 ponts disulfures permet d'en faciliter la synthèse, tout en conservant le motif structural cystine noose présent dans la protéine G native. Exemple 3 : Immunogénicité et protection A. Titre anti-VRS avant et après une immunisation chez des souris naïves Afin de tester l'immunogénicité des peptides G23a et G20a, les souris Balb/c ont été immunisées avec 6 ou 1,5 ru d'équivalent G2Na deux fois à JO et J14 par voie intramusculaire. Le peptide G2Na (dénommé également"G2A"ou"G2a") est le fragment aa 130 - 230 de la protéine G du VRS sous groupe A tel qu'identifié par exemple dans la liste des séquences de la demande WO 95/27787 par la séquence SEQ ID NO 1. Certaines souris ont été sensibilisées par VRS 20 jours avant la première immunisation afin de les rendre séropositives vis-à-vis de VRS. Les souris ont été ponctionnées avant chaque immunisation et les titres anticorps anti-G2Na, VRS-A et VRS-B ont été déterminés. Dix jours après la dernière immunisation, les souris ont été challengées avec 105pfu/501 de VRS-A. Le titre viral a été mesuré 5 jours après le challenge. Les souris immunisées par G20a ou G23a développent des réponses anticorps anti-VRS-A et VRS-B dès la première immunisation (voir figures 1A et 1B). Une augmentation est observée après un boost par les différentes molécules testées (résultats non montrés). B. Titre anti-VRS avant et après une immunisation chez des souris séropositives vis-à-vis de VRS-A ou de VRS B (exprimé en logo) Il a été constaté que les molécules restent immunogéniques même en présence d'anticorps VRS de type A (voir figures 2A et 2B) ou B (voir figures 3A et 3B). C. Protection contre un challenge VRS-A chez des souris immunisées par G23a ou G20a L'immunisation avec G23a ou G20a induit une protection des voies pulmonaires suite à un challenge avec VRS-A (voir figures 4A et 4B). Les résultats indiquent que G23a et G20a sont immunogéniques et protecteurs chez la souris naïve. De plus, l'immunogénicité et la protection observée avec ces deux molécules sont comparables à celles observées avec BBG2Na (le peptide BBG2Na est le peptide résultant de la fusion du peptide G2Na avec le fragment"BB"de la protéine de liaison à la sérum albumine humaine de Streptocoque, tel qu'identifié dans la demande WO 95/27787). Exempte 4 : Détermination du HSI Les cobayes sont immunisés à JO et J8 avec les différentes molécules adjuvantées par de l'adjuphos 20 % (v/v) en i. m.. A J21, un rappel est effectué avec les différentes molécules non adjuvantées en i. v. La mort des cobayes est alors évaluée. Un témoin positif d'expérience constitué d'ovalbumine à 200 ug est inclus pour chaque molécule testée (cf tableau 3 ci-après). Tableau 3 T+ (OVA) T-4mg 40 mg G20a560/60/60/6 Les résultats indiquent que G20 n'induit pas de HSI chez 6/6 animaux testés. Exemple 5 : Immunopatholosies Les souris sont immunisées trois fois avec G23a adjuvant par de l'alhydrogel 20 % à JO, J14 et J28. Les souris sont challengées à J34 avec 105 pfu 1 50 fll de VRS-A. Sept jours après le challenge, les poumons sont récupérés, digérés et les cellules infiltrant les poumons analysées par FACS ("Fluorescens Activated Cell Sorter"). Les cytokines sont elles aussi analysées par FACS après incubation une nuit avec un activateur non spécifique. L'IL-10 et l'IL-5 sont mesurés. Les résultats (voir figures 5A et 5B) indiquent que G23a, quelle que soit la dose testée, n'induit pas d'infiltrations de cellules de type granuleux (suivies par le marqueur RB6-8C5). En revanche, FI-VRS (VRS inactivé à la formaline), qui induit une immunopathologie, induit une infiltration de ce type de cellules dans les poumons de souris immunisées par FI-VRS et challengées par VRS. La mesure des cytokines de type Th2 (IL-10 et IL-5) indique que contrairement à FI-VRS, aucune pathologie n'est observée après immunisation par G23a. REVENDICATIONS 1/Peptide immunogène dérivé de la protéine G du VRS du sous-groupe A ou B comprenant au moins : - un premier peptide dérivé de la protéine G du VRS du sous-groupe A ou B comprenant au moins en position 173,176, 182 et 186 une cystéine, et en position Cterminale au plus l'acide aminé en position 192 ; et - un deuxième peptide dérivé d'une protéine du VRS du sous-groupe A ou B, ledit deuxième peptide étant situé en aval dudit premier peptide, de manière à ce que le peptide immunogène produit présente un pont disulfure reliant les résidus 173 et 186 et un deuxième pont disulfure reliant les résidus 176 et 182. 2/Peptide immunogène dérivé de la protéine G du VRS du sous-groupe A ou B de séquence présentant au moins 80 % d'homologie après alignement optimal avec la séquence peptidique du peptide selon la revendication 1. 3/Peptide selon la revendication 1 ou 2, caractérisé en ce que l'extrémité Cterminale dudit premier peptide comprend au plus l'acide aminé en position 190. 4/Peptide selon la revendication 1 ou 2, caractérisé en ce que ledit premier peptide présente une séquence choisie parmi la séquence 130-190,130-192, 140-190, 140-192,145-190, 145-192,148-190, 148-192,130-188, 140-188,145-188 ou 148- 188, et préférentiellement la séquence 140-190. 5/Peptide selon l'une des revendications 1 à 4, caractérisé en ce que ledit deuxième peptide contient au moins un épitope B du VRS A ou B. 6/Peptide selon l'une des revendications 1 à 5, caractérisé en ce que ledit deuxième peptide présente une séquence choisie parmi la séquence 144-158,144-159 de la protéine G du VRS et parmi les peptides de séquence 221-237,274-287, 262-268 et 483-488 de la protéine F du VRS. 7/Peptide selon l'une des revendications 1 à 6, caractérisé en ce que ledit peptide immunogène dérivé de la protéine G du VRS du sous-groupe A ou B présente une hypersensibilité immédiate négative. 8/Peptide selon l'une des revendications 1 à 7, caractérisé en ce que ledit peptide immunogène dérivé de la protéine G du VRS du sous-groupe A ou B présente la séquence SEQ ID NO l, SEQ ID NO 2 ou SEQ ID NO 3. 9/Séquence d'acide nucléique codant pour un peptide selon l'une des revendications 1 à 8. 10/Composition pharmaceutique caractérisée en ce qu'elle contient dans un milieu pharmaceutiquement acceptable, au moins un peptide selon l'une des revendications 1 à 8 et/ou une séquence d'acide nucléique selon la revendication 9. 11/Composition selon la revendication 10, caractérisée en ce qu'elle contient en outre au moins une protéine porteuse et/ou un adjuvant. 12/Composition selon la revendication 11, caractérisée en ce que la protéine porteuse consiste en des dérivés de la protéine DT dans lesquels au moins un résidu cystéine a été supprimé. 13/Composition selon la revendication 12, caractérisée en ce que la protéine porteuse consiste en une protéine de séquences SEQ ID NO 4, SEQ ID NO 5 et SEQ ID No 6. 14/Composition selon la revendication 11, caractérisée en ce que l'adjuvant est choisi dans le groupe d'adjuvant comprenant le MPL-A, le MF59, le Quil-A, l'ISCOM, le Diméthyl Dioctadécyl Ammonium sous forme de bromure (DDAB) ou de chlorure (DDAC), l'alum, l'adjuphos, les CpG, la Leif, la CT, la LT et les versions détoxifiées de la CT ou la LT. 15/Composition selon l'une des revendications 10 à 14, caractérisée en ce que ledit peptide est associé, par mélange ou par couplage, à la protéine porteuse et/ou à l'adjuvant. 16/Composition selon l'une des revendications 10 à 15, caractérisée en ce que ladite composition pharmaceutique contient en outre un deuxième antigène, immunogène ou haptène du VRS et/ou un antigène, immunogène ou haptène dérivé de microorganisme responsable de pathologies des voies aériennes choisi parmi les para influenza virus (PIV 1, 2,3, 4), l'influenza virus (A et B), les hantavirus, les streptocoques, les pneumocoques, haemophilus influenza type b, les rhinovirus, les coronovirus et les méningocoques. 17/Composition selon l'une des revendications 10 à 16, caractérisée en ce que ledit milieu pharmaceutiquement acceptable est constitué d'eau, d'une solution aqueuse saline ou d'une solution aqueuse à base de dextrose et/ou de glycérol. 18/Composition selon l'une des revendications 10 à 17, caractérisée en ce que ladite composition pharmaceutique est véhiculée sous une forme permettant d'améliorer sa stabilité et/ou son immunogénicité. 19/Anticorps polyclonaux ou monoclonaux dirigés contre un peptide selon l'une des revendications 1 à 8. 20/Anticorps selon la revendication 19, caractérisés en qu'ils sont humanisés. 21/Kit de diagnostic caractérisé en ce qu'il comprend un peptide selon l'une des revendications 1 à 8, une séquence d'acide nucléique selon la revendication 9 ou un anticorps selon la revendication 19 ou 20. 22/Utilisation d'un peptide selon l'une des revendications 1 à 8, d'une séquence d'acide nucléique selon la revendication 9 ou d'un anticorps selon la revendication 19 ou 20 pour la préparation d'une composition pharmaceutique destinée au traitement prophylactique ou thérapeutique des affections provoquées par le VRS, sous groupe A ou B présentant une réponse immunogénique, une protection croisée VRS A et B, une hypersensibilité immédiate négative et n'induisant pas d'immunopathologies. 23/Utilisation d'un peptide selon l'une des revendications 1 à 8, d'une séquence d'acide nucléique selon la revendication 9 ou d'un anticorps selon la revendication 19 ou 20 pour la préparation d'une composition pharmaceutique destinée à générer ou accroître une réponse immunitaire contre le VRS. 24/Conjugué de séquences SEQ ID NO 7, SEQ ID NO 8 et SEQ ID NO 9.