Brevet FR2824143A1 — publié le 20021031

la polyproline, la gélatine et l'albumine. La présente invention est relative aux utilisations d'un dispositif miniature de séparation et d'isolement de d'objets biologiques pour diverses applications dans le domaine de la biologie moléculaire, aux procédés de fabrications de puces à ADN ou à protéines notamment, ainsi qu'aux puces à ADN ou a protéines obtenues par la mise en _uvre de ces procédés. La biologie, et en particulier la génomique, connaît actuellement une révolution dans la façon de générer et de traiter les données de ses analyses. Alors que de plus en plus de données de séquences génétiques sont disponibles grâce aux grands projets de séquençages des organismes, les acteurs de la biologie, du monde médical et de l'industrie pharmaceutique cherchent à intégrer l'ensemble de ces données dans des analyses à grande échelle et multiparamétriques. Le monde des microtechnologies, en particulier celui des microsystèmes, a les moyens de répondre à cehe demande grâce à ses acquis en miniaturisation, en fonctionnalisation des surfaces, en microfluidique et en techniques de fabrication à grande échelle et à faible coût. Actuellement, le mariage de ces deux mondes a donné lieu à des outils d'analyse multiparamétriques connus sous le nom de puces à ADN. Ces outils sont dédiés à l'analyse de macromolécules biologiques (protéines et principalement ADN). Il existe un nombre important de recherches de part le monde dans des domaines très variés qui intègrent, via les microtechnologies, des protocoles biologiques à des dimensions de plus en plus réduites. Par exemple, les plaques de microtitration sont passées d'un format standard de 96 puits à un format de 384 puis de 1536 puits au fur et à mesure des progrès de la robotique. L'utilisation de ces microtechniques de plus en plus miniaturisées permet de diminuer les volumes des réactifs utilisés et ainsi de réduire les coûts d'analyse. Dans le cas particulier des puces à ADN, le principe d'analyse consiste à ordonner en matriçage X-Y des sondes nucléiques à des pas de plus en plus petits, de l'ordre de 20 1lm. De même, l'étape de traitement des échantillons biologiques subit la course à la réduction de taille avec l'intégration de plus en plus commune de réactions de po lymérisation en chane (P CR) dans des puc es à ADN ou de fonction de lyse des cellules. C'est ainsi qu'il a déjà été proposé, notamment dans le brevet US 6,071,394, de séparer et fixer des cellules sur des puces électroniques par diélectrophorèse, les cellules en suspension dans un tampon approprié étant séparées en fonction de leurs propriétés diélectriques. Cependant cette technique ne permet pas de séparer et d'isoler des objets biologiques uniques pour des analyses individualisées. La tendance actuelle qui passe par une réduction des volumes de réactifs utilisés a également pour conséquence l'utilisation de tests des analytes sur des réactifs biologiques fixés sur des surfaces solides, de façon à abandonner progressivement l'utilisation de tests en tubes avec des solutions homogènes. C'est ainsi qu'il a déjà été proposé diverses solutions pour la fixation de molécules biologiques d'intérét sur différents matériaux tels que le verre, le plastique ou le métal. Par exemple, pour la fixation des sondes nucléiques sur substrat, trois approches principales sont actuellement connues: - l'utilisation d'un substrat en verre recouvert de poly-Llysine qui est un polymère présentant une affinité avec les sondes nucléiques (Schena M. et al., science, 1995, 270 (5235), 467-470), l'utilisation de verre recouvert d'un silane fonctionnalisé, la sonde . nucléique portant alors une fonction complémentaire de façon à former une liaison covalente avec le silane (O'Donnell M.J. et al., Anal. Chem., 1997, 69, 2438-2443), - l'utilisation d'électrodes métalliques, en or par exemple, permettant la copolymérisation d'un monomère simple et d'un monomère porteur de la sonde nucléique. De même, dans le domaine de la protéomique, il a notamment été rapporté la fixation de peptides par l'intermédiaire de polymères conducteurs portant des fonctions pyrroles (polypyrroles), (Livache T. et al., Biosensors & Bioelectronics, 1998, 13, 629-634). Il est également possible de fixer des objets biologiques vivants tels que des bactéries ou des cellules eucaryotes sur des substrats solides par différentes techniques: - greffage d'anticorps spécifiques de la cellule à fixer sur un substrat solide; il existe en effet des anticorps contre les micro-organismes couramment utilisés en biologie moléculaire (bactéries, levures), tels que des anticorps anti-E. coli 1434 vendus par la société Fitzgerald Industries International, Inc., ainsi que des anticorps contre des récepteurs de surfaces (récepteurs CD) des cellules eucaryotes supérieures Iymphoïdes, - greffage de peptides spécifiques de certains types cellulaires sur le support (Holland J. et al., Biomaterials, 1996, 17, 2147-2156), - fonctionnalisation non spécifique du support par des polymères permeKant l'adhésion cellulaire (Aframian D. J. et al., Tissue Eng., 2000, 6 (3), 209 216). Ces techniques sont intéressantes dans la mesure o elles génèrent la formation de liaisons spécifiques entre l'objet biologique à fixer et le support; cependant elles nécessitent de nombreuses étapes de préparation et d'isolement avant que ceux-ci puissent enfin être fxés individuellement sur le support. D'autre part, il a déjà été proposé, notamment dans les demandes internationales WO 00/09747, WO 00/34512 et 00/34514 des procédés d'identification de séquences polynucléotidiques et/ou des protéines correspondantes à partir d'un échantillon d'acides nucléiques. Cependant, ces procédés nocessitent la préparation individuelle des fragments d'ADN et par conséquent de nombreuses opérations de pipetage. Les Inventeurs se sont donc fixés pour but de pourvoir à un dispositif miniature de séparation et d'isolement d'objets biologiques permeKant d'effectuer différents types d'applications dans le domaine de la biologie moléculaire tout en conservant une approche matricielle à grand nombre de points dans laquelle chaque point contient un et un seul type ou catégorie d'objet biologique, mais dans lequel les opérations préalables de préparation, de séparation ou d'isolement peuvent étre évitées ou réduites, diminnant ainsi considérablement le nombre de manipulations, de pipetages et le coût. La présente invention a donc pour objet l'utilisation d'un dispositif miniature de séparation et/ou d'isolement d'objets biologiques, comportant au moins une première électrode intégrée au dispositif et au moins une deuxième électrode intégrée ou externe au dispositif, constitué par une structure pourvue d'une matrice de microcuvettes réactionnelles, chaque microcuvette comportant un fond, sur au moins une partie duquel est fixé un réactif apte à fixer l'objet biologique à isoler de façon à constituer une zone de réception, caractérisé en ce que ledit fond est dépourvu de trou et que la surface maximale dudit fond de chaque microcuvette est définie de manière à isoler un objet biologique unique, ladite structure étant reliée à un circuit d'alimentation pour créer une différence de potentiel entre ladite première électrode et ladite deuxième électrode, pour des applications liées à la biologie moléculaire, notamment pour la fabrication de puces à acides nucléiques (puces à ADN), la l O fabrication de puces à protéines, le tri de banques génomiques, l'analyse de banques de transcrits, la mesure d'une variation de l'activité d'une protéine fonctionnelle, la réalisation d'antivirogrammes et pour le criblage de protéines ou le criblage pharmaceutique. Grâce au dispositif utilisé conformément à l'invention, dans lequel lS chaque microréservoir possède au moins une microcuvette, il est désorrnais possible de ne fixer qu'un seul objet biologique par microcuvette, étant donné que la surface d'accroche de l'objet biologique à fixer recouvre la zone de réception, chaque microcuvette ne contenant donc qu'un seul type d'objet biologique sélectionné. Par conséquent, selon l'invention, la zone d'accroche de l'objet biologique à fixer ou la zone de recouvrement par l'objet biologique du fond de la microcuvette a soit une surface sensiblement identique à la surface de la zone de réception, soit une surface supérieure à la surface de la zone de réception. Selon l'invention, la surface maximale du fond de chaque micro cuvette est de préférence inférieure ou égale à deux fois la plus petite surface de l'objet biologique à isoler. Dans une forme de mise en _uvre prétérée de l'invention, la surface dudit fond est inférieure ou égale à la plus petite surface de l'objet biologique à isoler. Plus particulièrement, cette surface est généralement comprise entre 1 1lm2 et 400 1lm2 et plus préférentiellement entre l et 50 1lm2. Les objets biologiques sélectionnés et fixés peuvent ensuite être traités collectivement de façon à mettre en _uvre des applications liées à la biologie moléculaire comprenant notamment l'élimination des objets biologiques non fixés, la séparation et/ou l'isolement d'objets biologiques recombinants, la libération du matériel génétique des objets biologiques par exemple par Iyse chimique ou électrique, une étape d'amplification d'une partie ou du matériel génétique qu'ils contiennent. Dans le cas de l 'utilisation du dispositif conforme à l' invention pour séparer et/ou isoler des objets biologiques recombinants, on utilise, avant l'étape de fixation des objets biologiques, une ou la combinaison de ces deux formes de mise en _uvre: - un vecteur de clonage pour transformer les objets blologiques l O portant un gène qui code pour une protéine spécifique qui sera présentée en surface de l'objet biologique (par fusion avec le début du gène Ipp par exemple) de telle sorte que la fixation des objets biologiques se fera par une interaction entre cette protéine et un réactif tel que défini dans le dispositif conforrne à l' invention (petite molécule ou anticorps spécifique). Les objets biologiques non transformés ne seront alors pas fixés sur le dispositif miniature conforme à l'invention, - le clonage d'un fragment d'ADN dans le vecteur de clonage, ledit fragment empêchant l'expression d'un gène codant pour une protéine toxique pour l'objet biologique recombinant. Au sens de la présente invention, on entend par applications lices à la biologie moléculaire, des applications permettant d'obtenir des ARN, des ADN ou des protéines sur les dispositif conforme à l'invention, notamment l'électroporation chimique ou électrique, la microinjection par microcapillaire, la lyse d'objets biologiques, l'amplification d'acides nucléiques utilisant par exemple des réactions de type PCR (polymerase chain reaction) ou NASBA (nucleic acid sequence-based amplification), la réplication d'acides nucléiques par cercle roulant, la transcription et la traduction de gènes, etc... Ces applications peuvent également correspondre à des réactions de transcription d'ADN en ARN messagers et à des réactions de traduction d'ARN messagers en protéines. Elles peuvent également concerner d'autres concepts tels que l'expression de protéines recombinantes, le tri d'une banque génomique ou d'une culture cellulaire en fonction de leur composition en acides nucléiques ou protéique, le criblage (de protéines recombinantes, enzymatique ou pharmaceutique), notamment pour la recherche de ligands protéiques ou nucléotidiques d'une cible donnée, le diagnostic, des applications de type "differencial display", puce à acides nucléiques, puce à protéines, l'analyse de banques de transcrits, le double hybride, la mesure d'une variation de l'activité d'une protéine fonctionnelle, etc... En particulier, ce dispositif peut étre utilisé pour le criblage d'euzymes. Le dispositif utilisé conformément à l'invention permet la fixation d'un seul objet biologique d'intérêt sur la zone de réception qui constitue en fait une zone piège. Selon l'invention, la matrice de microcuvettes réactionnelles du lO dispositif peut étre surmontée au moins en partie d'une ou plusieurs couches de matériaux isolants et/ou d'une grille en plastique biocompatible rapportée, de façon à former une matrice de microréservoirs. Les matériaux isolants peuvent par exemple être choisis parmi les polymères isolants tels que les polyimides et les résines telles que par exemple les résines SU-8. Selon l'invention, un objet biologique est caractérisé par son contenant et son contenu. Le contenant correspond à tout élément permettant de compartimenter le contenu. Le contenant peut par exemple étre la paroi d'une cellule bactérienne, l'enveloppe d'un virus, la membrane d'une cellule, une double couche lipidique, des micelles, une bicouche phospholipidique traversée par des protéines intrinsèques, etc. le contenu correspond au matériel biologique isolé dans un compartiment qu'est le contenant. Le contenu peut par exemple correspondre à des acides nucléiques, des protéines, des riDosomes, des vésicules membranaires ou à un mélange complexe de ceux-ci. A titre d'exemple d'objet biologique, on peut citer toute cellule, saine ou non, qu'elle soit procaryote ou eucaryote, les virus, les liposomes, etc... A titre d'exemple de cellule, on peut citer les bactéries, les levures, les champignons, les microalgues et également des cellules d'origine végétale, animales et humaines. A titre d'exemple de virus, on peut citer le virus HIV, les bactériophages, etc... La deuxième électrode interne ou externe de ce dispositif permet également la fixation ultérieure d'un ou plusieurs éléments dérivés de l'objet biologique d'intérêt préalablement fixé, ces dérivés incluant les produits issus de la lyse des objets biologiques, et/ou de leur traitement par une méthode d'amplifcation telle que par exemple la PCR localisée ou tout autre traitement biologique, chimique ou éleckique. Lorsque ces dérivés correspondent à des acides nucléiques, on parle de puces à acides nucléiques ou à ADN. Lorsque ces dérivés correspondent à des protéines, on parle de puce à protéines. La tail le de s microréservoirs e st défi ni e de mani ère à traiter, dans un volume minimal, I'objet biologique unique isolé. Ces microréservoirs ont généralement une largeur et/ou une longueur comprise entre 5 et 500 1lm et prétérentiellement entre 5 et 100 m. Selon une forme de réalisation particulière de l'invention, le dispositif miniature utilisé peut comporter une alternance de couches conductrices (électrodes) et de couches de matériaux isolants. Selon une forme de réalisation de l'invention, une face de la première électrode intégrce au dispositif peut constituer le fond des microcuvettes. Selon une autre forme de réalisation de l'invention, le fond des microcuvettes du dispositif est constitué par une couche en verre, en plastique ou en silicium. Lorsque le dispositif utilisé conformément à l'invention comporte une deuxième électrode intogrée, celle-ci est déposée sur une première couche de matériau isolant et est située dans un plan espacé du fond des microcuvettes. Lorsque le dispositif utilisé conformément à l'invention comporte une deuxième électrode externe, celle-ci peut être solidaire d'un capot ou d'un couvercle, de préférence constitué par une ou plusieurs couches de matériau isolant. Par conséquent une des couches de matériaux isolants peut ne pas faire p artie inté grante du disp o sitif conforme à l' inventi on mais se présenter sous la forme d'une pièce rapportée amovible (cache, capot, couvercle) venant recouvrir au moins en partie ledit dispositif et contenant éventuellement au moins une électrode. Le dispositif utilisé conformément à l'invention peut aussi comporter au moins une troisième électrode intogrée au dispositif, une deuxième couche de matériau isolant étant interposée entre la deuxième et la troisième électrode. Dans ce cas, et selon une variante de l 'invention, le dispo sitif peut comporter plus ieurs deuxièmes et/ou troisièmes électrodes isolées entre elles. Dans les dispositifs conformes à l'invention, au moins un bord d'une des deuxièmes et/ou troisièmes électrodes et/ou d'une des premières et/ou deuxièmes couches de matériaux isolant peut constituer au moins une partie d'un bord d'un microréservoir. Selon l'invention, les premières, deuxièmes et troisièmes électrodes, ainsi que l'électrode externe sont constituées par au moins une couche métallique par exemple en chrome, en or ou en platine. l O Ces couches métalliques ont en général une épaisseur comprise entre 0,1 et lO m. La nature du réactif utilisé pour la fixation des objets biologiques peut varier en fonction de leur nature et de la nature du fond des microcuvettes. En effet, lorsque le fond des microcuvettes est constitué par une l 5 électrode telle que décrite ci-dessus, le réactif utilisé est de prétérence choisi parmi les copolymères conducteurs, tels que par exemple les polypyrroles, sur lesquels sont fixés des protéines, des peptides ou toutes molécules spécifiques du type d'objet biologique à fixer telles que par exemple des anticorps, des récepteurs, des glycoprotéines, des lectines, des molécules d'adhésion cellulaire ("Cell Adhesion Molecules": CAM), la laminine, la fibronectine, les intégrines, les sucres, etc Au sein d'un même dispositif, les réactifs des microcuvettes peuvent être identiques ou différents. Les copolymères conducteurs sont par exemple décrits dans la demande internationale WO 94/22889. Les poly pyrroles sont particulièrement préférés selon l'invention. Parmi les peptides pouvant être fixés sur les monomères du copolymère conducteur, on peut notamment citer les peptides de liaison spécifiques aux objets biologiques à isoler, tels que le fragment du complément C3b et tels que les récepteurs membranaires de surface de l'objet biologique comme des peptides contenant la séquence Arginine-glycine-aspartate (encore appelée RGD). Les molécules spécifiques fixées sur les monomères du copolymère conducteur peuvent notamment être choisies parmi la protéine A et la protéine G. La fixation des molécules spécifiques sur les monomères du copolymère conducteur et en particulier sur les monomères pyrroles peut étre effectuce suivant différentes techniques: - soit les molécules spécifiques sont fixées directement sur les monomères d'un polymère conducteur lesdits monomères étant porteurs de fonctions -NHS ou alUéhyde capables de réagir avec les fonctions amines primaires de la molécule spécifique utilisée, - soit les molécules spécifiques sont fixées indirectement sur les monomères d'un polymère conducteur porteur de la fonction biotine, au moyen d'un empilement chimique successif streptavidine-biotine-molécule spécifique. Pour réaliser cet empilement chimique, le dispositif utilisé conformément à l'invention est alors traité collectivement de façon à réaliser la copolymérisation des monomères du polymère conducteur porteur de la fonction blotine, puis à traiter ledit dispositif par de la streptavidine puis avec une molécule spécifique liée à la biotine, pour obtenir des copolymères pyrrole-bictine-streptavidine-bictine-molécule spécifique. Dans une première forme de mise en _uvre, le réactif utilisé pour fixer l'objet biologique peut être spécifique de celui-ci pour permettre une interaction directe: réactif de la microcuvette-objet biologique. Dans une deuxième forme de mise en _uvre, le réactif utilisé n'est pas spécifique de l'objet biologique. Celui-ci devra donc étre préalablement fonctionnalisé par exemple par des anticorps spécifiques pouvant réagir avec les réactifs utilisés. Le réactif fixé uniquement sur la zone piège par l'intermédiaire du polymère conducteur, tel que par exemple la protéine A ou la protéine G. va reconnatre le fragment Fc des anticorps fixés préalablement sur les objets biologiques à immobiliser. Lorsque le fond des microcuvettes est constitué par une couche en verre, en plastique ou en silicium, le réactif utilisé est de prétérence: - un polymère non spécifique du type d'objet biologique à fixer tel que par exemple de la poly-L-lysine; ledit polymère étant déposé localement sur les zones de réception (technique "lift-off': dépôt d'une résine photoimageable, insolation localisée puis dépôt du polymère sur la résine, puis déblocage de la résine), - une protéine ou un peptide; dans ce cas les protéines et les peptides sont fixés à ladite couche en verre, en plastique ou en silicium recouverte d'une couche de silane modifié par des fonctions -NHS ou aldéhyde sur lesquelles est fixé ledit réactif; les protéines et les peptides utilisés dans ce cas étant de même nature que ceux décrits ci-dessus. La présence d'au moins une première électrode intégrée au dispositif et d'au moins une deuxième électrode intégrée ou externe au dispositif utilisé conformément à l'invention permet d'effectuer un traitement identique dans toutes les microcuvettes, tel que par exemple l'application d'un champ électrique de Iyse des objets biologiques, un champ électrique de copolymérisation ou un champ électrique de perméabilisation membranaire. En particulier, ces électrodes peuvent permettre la fixation spécifique d'objets biologiques tels que par exemple des micro-organismes, puis une fois les micro-organismes fixés dans les microcuvettes, la lyse ou la perméabilisation de ceux-ci, la fixation par copolymérisation électrique des sondes nucléiques issues d'une amplification génomique effectuée directement dans chacun des microréservoirs, de façon à obtenir des microréservoirs porteurs de sondes nucléiques en grande quantité. La deuxième électrode présente dans tous les dispositifs utilisés conformément à l'invention peut étre soit préfonctionnalisce par exemple par des anticorps spécifiques pour extraire de chaque objet biologique une protéine spécifique, soit plus généralement être utilisée pour fixer par électrochimie un produit issu de l'objet biologique à la suite par exemple d'une réaction d'amplification ou de transcription. Les différentes applications pour lesquels sont utilisés les dispositifs miniatures décrits précédemment peuvent nécessiter de faire des répliques du matériel génétique des objets biologiques isolés. Ces répliques peuvent être réalisces de différentes manières: - soit les différents objets biologiques isolés sur un premier dispositif (objets biologiques pères) sont mis en culture; on obtient alors une population homogène de chaque objet biologique au niveau de chaque microréservoir. Les objets biologiques issus de la multiplication cellulaire, encore appelés objets biologiques fils, peuvent être récupérés au niveau d'un second dispositif, par exemple par pipetage, pour constituer la copie conforme du premier dispositif; - soit le matériel génétique de chaque objet biologique père est amplifié par exemple par PCR, en utilisant des amorces portant un monomère d'un polymère conducteur. Les produits d'amplification pourront ainsi facilement être récupérés grâce à un champ électrique et disposé au sein d'un nouveau dispositif puis fixés sur une électrode dudit nouveau dispositif; - soit le matériel génétique de chaque objet biologique est transcrit en ARNs messager sur un premier dispositif (puce mère), puis les ARNs messagers ainsi obtenus sont transférés par pipetage collectif ou par application d'un champ électrique dans un second dispositif miniature neuf (puce fille) et fixés sur une électrode dudit nouveau dispositif. Les dispositifs miniatures décrits ci-dessus peuvent également être utilisés: - pour exprimer à 1'intérieur ou à 1'extérieur des objets biologiques une partie de leur ou leur matériel génétique; cette expression comprend notamment les étapes de transcription et de traduction: - pour détecter au moins une propriété de la ou des protéines isolées sur le dispositif miniature conforme à l'invention par révélation de ladite propriété; - dans le cadre des procédés défmis dans les demandes internationales WO 00/09747, WO 00/34512, WO 00/34514 et WO 00/34513; pour l'analyse de transcrits comprenant une étape de détection d'un gène ayant subi une différence d'expression; - pour la mesure d'une variation de l'activité d'une protéine fonctionnelle caractérisée en ce que l'on teste 1'effet de différentes molécules sur l'activité de ladite protéine fonctionnelle; - pour le criblage protéique ou pharmaceutique notamment pour la recherche d'enzymes ou de ligands protéiques ou nucléotidiques d'une cible donnée. La révélation des protéines produites au cours de ce procédé peut se faire de différentes manières: - le substrat de la protéine exprimée que l'on souhaite révéler spécifiquement est introduit dans les objets biologiques isolés par un choc électrique; - les protéines produites exprimées au cours de ce procédé sont évacuées des objets biologiques isolés, par un choc électrique au niveau des microréservoirs pour pouvoir étre révélées spécifiquement en présence de leur substrat qui pourra par exemple étre fixé au niveau d'un microréservoir; - les objets biologiques sont lysés et les protéines exprimoes sont révélées spécifiquement en présence de leur substrat qui pourra par exemple étre fixé au niveau d'un microréservoir. Cette forme de mise en _uvre du procédé est avantageuse car elle permet de sép arer et de caractériser les protéine s foncti onnelles co dées par l es aci de s nucléiques d'un échantillon brut d'objets biologiques. Uniquement les protéines recombinantes peuvent être fixées sur les puces à protéines en utilisant, avant l'étape de fixation des objets biologiques, un vecteur de clonage pour transformer les objets biologiques permettant le marquage de la protéine recombinante par un épitope universel comme par exemple le marquage par plusieurs acides aminés histidine. Les dispositifs miniatures utilisés conformément à l'invention sont de préférence équipés d'un moyen de fermeture, tel que par exemple un capot ou un film transparent, permettant d'obturer individuellement ou collectivement tous les ,. mlcroreservolrs. L'utilisation de dispositifs comportant une première électrode intégrée au dispositif et une deuxième électrode externe à celui-ci est particulièrement adaptée à la perméabilisation, à la libération du matériel génétique ou à la lyse des objets biologiques fixés, à la copolymérisation des acides nucléiques ou des protéines issus des objets biologiques ou des différents procédés de biologie moléculaire. D'autres caractéristiques des dispositifs miniatures utilisés conformément à l'invention apparaissent sur les figures 1 à 6 annexées dans lesquelles: - la figure 1 représente un dispositif miniature selon l'invention, équipé d'un support 7 et d'un circuit d'alimentation électrique 103, dans lequel le fond de chaque microcuvette 5 est constitué par une première électrode 1 formant une zone de réception 9 sur laquelle est fixé un réactif, la première électrode 1 étant surmontée par une première couche de matériau isolant 2 sur laquelle repose une deuxième électrode 3 surmontée d'une deuxième couche de matériau isolant 4 formant des microréservoirs 6, - lafigure 2 représente un dispositif miniature selon 1'invention, équipé d'un support 27 et d'un circuit d'alimentation électrique 103, dans lequel le fond de chaque microcuvette 25 est constitué par une première électrode 21 formant une zone de réception 29 sur laquelle est fixé un réactif, la première électrode 21 étant surmontée par une première couche de matériau isolant 22 sur laquelle repose une deuxième couche de matériau isolant 24 formant des microréservoirs 26, ce dispositif étant équipé d'une deuxième électrode externe 28, - la figure 3 représente un dispositif miniature selon l'invention, équipé d'un support 37 et d'un circuit d'alimentation électrique 103, dans lequel le fond de chaque microcuvette 35 est constihué par une première électrode 31 formant une zone de réception 39 sur laquelle est fixé un réactif, la première électrode 31 étant surmontée par une première couche de matériau isolant 32 sur laquelle repose une deuxième électrode 33 surmontée d'une deuxième couche de matériau isolant 34 formant des microréservoirs 36, ce dispositif étant équipé d'une électrode externe 38, - la figure 4 représente un dispositif miniahre selon l'invention identique à celui représenté sur la figure 1 sauf qu'il comporte en outre un moyen de fermeture amovible 100 perrnettant de fermer chacun des microréservoirs 46, - la figure 5 représente un dispositif miniature selon 1'invention identique à celui représenté sur la figure 2 sanf qu'il comporte en outre un moyen de fermeture amovible 100 permettant de fermer chacun des microréservoirs 46 dans lequel est intégré une deuxième électrode externe 48, - la figure 6 représente un dispositif miniature selon l'invention, équipé d'un support 67 et d'un circuit d'alimentation électrique 103, dans lequel le fond de chaque microcuvette 65 est constituée par une couche de verre ou de silicium 63 formant une zone de réception 69 sur laquelle est fixé un réactif, ladite couche de verre ou de silicium 63 étant surmontée par une première couche de matériau isolant 62 formant des microréservoirs 66 sur laquelle repose une première électrode 61 elle même surmontée par une deuxième couche de matériau isolant 64, ce dispositif étant équipé d'une deuxième électrode externe 68. I1 est bien sûr entendu que les dispositifs illustrés sur ces figures correspondent à des formes particulières de réalisation de l 'invention et n' en constituent en aucune façon une limitation. Les procédés de fabrication de tels dispositifs sont connus et décrits par exemple dans la demande de brevet FR-A-2 781 886. Selon l'invention, les objets biologiques à isoler peuvent être choisis parmi les cellules saines ou non, comme par exemple des cellules infectées par des virus ou des cellules malignes. Ces objets biologiques peuvent donc correspondre à des cellules procaryotes ou eucaryotes, des virus, des liposomes ou des microalgues. Selon une forme de réalisation particulièrement prétérée de l'invention, les objets biologiques à isoler sont choisis parmi les bactéries et les levures, les bactéries étant prétérentiellement issues d'une banque de séquences génomiques. Selon une forme de réalisation particulière de l'invention, ces dispositifs miniatures peuvent être utilisés pour l'obtention de puces à acides nucléiques ou à protéines ou bien pour la détection de protéines fonctionnelles. Ces puces à ADN ou à protéines constituent un autre objet de l'invention. L'invention a donc également pour objet un procédé de séparation et/ou d'isolement d'objet biologique pour l'obtention de puces à acides nucléiques ou à protéines ou pour la détection de protéines fonctionnelles caractérisé en ce qu'il comprend au moins les étapes a) et b) suivantes: a) la mise en contact d'au moins un dispositif miniature tel que défini précédemment avec une solution d'objets biologiques homogénéisée, en particulier avec une solution de culture de cellules biologiques, pour permettre la fixation desdits objets biologiques au fond des microcuvettes sur les zones de réception, à raison d'au plus un objet biologique par microcuvette, b) l'élimination des objets biologiques non fixés de façon à obtenir un dispositif miniature sur lequel les objets biologiques à isoler sont immobilisés. Ce procédé peut comporter une étape préliminaire à l'étape a), consistant à transformer les objets biologiques par un vecteur de clonage portant un gène qui code pour une protéine spécifique qui sera présentée en surface des objets biologiques de telle sorte que la fixation des objets biologiques se fera par une interaction entre cette protéine et un réactif spécifique de ladite protéine et tel que défini précédemment et/ou par clonage d'un fragment d'ADN dans un vecteur, ledit fragment empêchant l 'expression d'un gène co dant pour une protéine toxique pour l'objet biologique recombinant. Selon une forme de réalisation prétérée de l'invention, on utilise de un dispositif comportant des microréservoirs et ce procédé comporte une étape au cours de laquelle le matériel génétique des objets biologiques est libéré dans lesdits microréservoirs par toute technique connue de l'homme du métier (Iyse, choc électrique, etc...). Les dispositifs utilisés au cours de ce procédé comportent également de préférence une deuxième électrode interne ou externe adaptée à la perméabilisation des objets biologiques fixés. Lorsque ce procédé est utilisé pour l'obtention de puces à acides nucléiques, il comporte alors une étape au cours de laquelle le matériel génétique des objets isolés est amplifié pour obtenir des séquences amplifiées. Cette étape d'amplification est en général suivie d'une étape de fixation par électropolymérisation des séquences amplifiées sur une deuxième électrode du dispositif utilisé. Lorsque ce procédé est utilisé pour l'obtention de puces à protéines ou pour la détection de protéines fonctionnelles, il comprend de prétérence, après l'étape b), une étape de transcription et de traduction du matériel génétique des objets biologiques isolés en protéines. Les protéines ainsi exprimées peuvent étre fixées, comme décrit précédemment, sur une deuxième électrode du dispositif utilisé. C e pro c édé peut en p articuli er étre uti l i sé pour l 'o btenti on de puc es à protéines recombinantes, et dans ce cas, avant l'étape a), le procédé comporte alors une étape de transformation des objets biologiques par un vecteur de clonage afin de permettre- le marquage des protéines recombinantes par un épitope universel. Lorsque ce procédé est utilisé pour la détection de protéines fonctionnelles, il comprend alors, après l'étape de traduction, une étape de révélation d'au moins une propriété des protéines isolées. Une mesure de la variation de l'activité des protéines fonctionnelles ainsi isolée peut également être réalisée selon une méthode consistant à tester l'effet de différentes molécules sur l'activité desdites protéines fonctionnelles. Selon une forme de réalisation particulière de l'invention, le procédé de fabrication d'une puce à acides nucléiques (puce à ADN) est caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes: a) la mise en contact d'au moins un dispositif miniature tel que défini précédemment avec une solution d'objets biologiques homogénéisée, en particulier avec une solution de culture de cellules biologiques, pour permettre la fixation desdits objets biologiques au fond des microcuvettes sur les zones de réception, à raison d'au plus un objet biologique par microcuvette, b) I'élimination des objets biologiques non fixés de façon à obtenir un dispositif miniature sur lequel les objets blologiques à isoler sont immobilisés, c) l'introduction dans les microréservoirs d'un mélange réactionnel commun contenant tous les réactifs nécessaires à une amplification génomique, ledit mélange réactionnel comprenant notamment au moins une amorce fonctionnalisée par des groupements pyrrole, d) la Iyse ou la perméabilisation des objets biologiques fixés au fond des microcuvettes de façon à mettre en contact le matériel génétique qu'ils contiennent avec les réactifs nécessaires à une amplification des séquences, e) la fixation des séquences amplifiées sur une deuxième électrode pour obtenir une puce à acides nucléiques. Afin d'obtenir ces puces à ADN, il est possible d'utiliser les dispositifs tels que ceux illustrés par les figures 1, 3 et 6. Dans ce cas on utilise de préférence des dispositifs comportant des microcuvettes dont le fond à une surface d'environ 1 m2, la culture cellulaire étant alors prétérentiellement une banque bactérienne de séquences nucléotidiques. Le procédé conforme à l'invention ne nécessite ni micropipetage, ni positionnement délicat des objets à isoler. L'avantage de ce procédé est de fabriquer de manière collective toutes les sondes de la puce, la nature des sondes et leur représentativité étant directement reliées à la diversité de la culture de départ. Par exemple, les cellules de départ (bactéries, levures) peuvent étre issues de la transformation de cellules hôtes par une banque de vecteurs recombinants portants des séquences nucléotidiques (séquence génomique, séquence d'ADNc, séquence différentielle, etc....). Les sondes sont fabriquées par amplification des séquences nucléotidiques contenues dans les vecteurs recombinants grâce à des amorces incluses dans le vecteur. La puce est alors utilisée comme une matrice d'étalement d'une banque de clones. La puce est aléatoire dans le sens o l'on ne connaît pas la nature exacte de chaque sonde dans chaque microcuvette. C'est le principe du clonage. En effet, le clonage de bactéries ou de levures est habituellement réalisé par étalement des cellules sur un milieu nutritif solide. Les cellules sont ainsi individualisées spatialement. Après de nombreuses divisions (au-delà de 20 heures de culture au moins), la cellule individualisée a formé une colonie de cellules toutes identiques. La multiplication des cellules a ainsi induit indirectement l'amplification de la séquence présente dans le vecteur recombinant. La difficulté de ce procédé de clonage classique est d'obtenir un étalement régulier de colonies bien indépendantes, au maximum 20-30 bactéries/cm2 pour pouvoir ensuite isoler la colonie intéressante. Il faut ensuite remettre en culture cette colonie intéressante, ce qui nécessite encore quelques heures de culture supplémentaires. Par contre, selon le procédé conforme à l'invention, l'équivalent de 5000 clones/cm2 est réalisable de façon rapide, avec un étalement ordonné. L'amplification peut se réaliser en l heure et le greffage par polypyrrole est instantané. Les difficultés de culture de certains microorganismes, de transfert sur membrane et de fixation d'ADN sont ainsi évitées. Les puces à ADN conforrnes à l'invention peuvent par exemple être utilisées pour le criblage à grande échelle d'une banque de gènes. Elles permettent en particulier: - de trouver la séquence complète d'un gène à partir d'un fragment connu qui sera marqué et hybridé sur la puce: le ou les microréservoirs marqués (positifs) contenant la séquence du gène recherché; - de trouver des gènes homologues par hybridation peu stringente (gènes homologues inter-espèces ou gènes d'une même famille), à partir de la séquence d'un gène de départ qui sera marquce et hybridée sur la puce: le ou les microréservoirs positifs contenant la séquence de gènes homologues; - de déterminer la représentativité d'un gène particulier dans la banque en utilisant le gène en question comme sonde et en divisant le nombre de microréservoirs positifs par le nombre total de microréservoirs afin d'évaluer la qualité de la banque et d'évaluer les critères de représentativité des gènes en fonction de leur quantité et de leur taille; - d'évaluer la qualité d'une banque normalisée (tous les gènes étant représentés un même nombre de fois), la qualité d'une banque de soustraction (pas d'hybridation croisée sur les mêmes microréservoirs). Les puces à ADN conformes à l'invention peuvent également être utilisées pour le criblage d'ADN en fonction d'une protéine cible. Dans ce cas les sondes fixées sur la puce sont un panel de promoteurs. On cherche la séquence sur laquelle se fixe une protéine cible trans-régulatrice donnce. Cette protéine est marquée au préalable et on la met en incubation dans chaque microréservoir de la puce. Les microréservoirs positifs contiennent la séquence du promoteur spécifique de la l S protéine. Les dispositifs conformes à l'invention, et en particulier les dispositifs illustrés par les figures l et 3 dans lesquels la deuxième électrode a été fonctionnalisée avec un anticorps spécifique contre un épitope universel (anticorps anti-HA, anti-myc ou anti-poly-hystidine) peuvent également être utilisés pour la fabrication de puces à protéines. Ces puces à protéines constituent un autre obj et de l'invention. L'invention a donc également pour objet un procédé de fabrication d'une puce à protéines caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes: a) la mise en contact d'au moins un dispositif miniature tel que défini précédemment avec une solution de culture de cellules biologiques transformoes par un vecteur recombinant portant un gène permettant le tri ultérieur des clones recombinants, ledit vecteur permettant en outre le marquage de la protéine recombinante par un épitope universel (de type poly-histidine par exemple), pour permettre la fixation desdites cellules au fond des microcuvettes sur les zones de réception, à raison d'au plus une cellule par microcuvette, b) l'élimination des cellules non fixées de façon à obtenir un dispositif miniature sur lequel les cellules à isoler sont immobilisées, c) l'introduction dans les microréservoirs des réactifs induisant la transcription et la traduction du matériel génétique de façon à permettre la synthèse des protéines correspondantes, d) la libération des protéines recombinantes exprimées par exemple par Iyse des objets biologiques fixés au fond des microcuvettes, e) la fixation des protéines portant l'épitope universel au niveau d'une deuxième électrode interne au dispositif, celle-ci ayant préalablement été fonctionnalisée par exemple avec des anticorps antiépitope universel, f) I'élimination éventuelle par lavage des autres constituants des objets biologiques, pour obtenir une puce à protéines. Seules les protéines recombinantes sont retenues au niveau de cette puce. La puce à protéines aléatoire ainsi obtenue peut étre utilisée par exemple pour la réalisation de tests biochimiques ou de reconnaissance protéine/protéine avec une protéine cible marquée pour laquelle on veut identifier dans la banque les partenaires protéiques avec qui elle peut interagir, comme par exemple le double hybride ou encore de tests de reconnaissance protéine/ADN protéine/sucre, etc.... La fabrication des puces à protéines peut également étre réalisée sans tri préalable de la banque. Selon une forme de réalisation particulière, et lorsque l 'on utili se par exemple les dispositifs illustrés par les figures 1 et 3, tous les réactifs peuvent étre fixés par l'intermédiaire de groupements pyrroles. On effectue alors la synthèse de monomères pyrroles porteurs de fonctions -NHS que l'on couple par des liaisons NHS-NH2 à différents anticorps, par exemple à un anticorps dirigé contre l'épitope universel, un autre anticorps étant spécifque de la cellule à immobiliser. On obtient ainsi par exemple un monomère pyrrole-anticorps l (dirigés contre la cellule à immobiliser) et un monomère pyrrole-anticorps 2 (dirigé contre l'épitope universel). Le dispositif conforme à l'invention est alors immergé dans une solution contenant un mélange pyrrole/pyrrole-anticorps l et la première électrode est activée afin de fonctionnaliser le fond des microcuvettes. .i.6 Après rinçage, le dispositif conforme à l'invention est ensuite immergé dans une solution contenant un mélange pyrrole/pyrrole-anticorps 2 et la deuxième électrode est activée afin de la fonctionnaliser. Le dispositif ainsi fonctionnalisé est ensuite trempé dans une solution de bactéries. Par reconnaissance et encombrement stérique, une bactérie unique est alors fixée au fond de chacune des microcuvettes, sur la première électrode. La traduction des protéines est alors effectuce intra-bactérie comme décrit ci-dessus, puis les bactéries sont lysées de façon à libérer les protéines épitope universel synthétisées qui, si elles sont reconnues par l'anticorps anticorps 2, seront l O fixces sur la deuxième électrode. Selon une autre forme de réalisation particulière de ce procédé, et lorsque l'on utilise un dispositif comportant des microcuvettes dont le fond est par exemple constitué par une couche de verre, tel que celui représenté par la figure 6, il est possible de fixer la bactérie par un polymère non spécifique ou par silanisation l 5 NHS et fixation d'un anticorps l spécifique du type de cellule à immobiliser, puis on procède comme précédemment décrit. Selon une variante de ce procédé, la fabrication de puces à protéines peut étre réalisée en effectuant les étapes suivantes consistant en: a) la mise en contact d'au moins un dispositif miniature tel que défini précédemment et dans lequel le fond des microcuvettes est constitué par une couche de verre, avec une émulsion dont chaque micelle contient un gène et le milieu réactionnel nécessaire pour effectuer l'expression du gène in vtro de façon compartimentée, pour permettre la fixation desdits micelles au fond des microcuvettes sur le s zo nes de récepti on, à rai son d' au p lus un mi c el le par mi crocuvette, b) I'élimination éventuelle des micelles non fixés de façon à obtenir un dispositif miniature sur lequel les micelles à isoler sont immobilisés, d) la lyse des micelles fixés au fond des microcuvettes de façon à libérer les protéines exprimoes, e) la fixation des protéines au niveau d'une deuxième électrode interne au dispositif et fonctionnalisée, f) l'élimination éventuelle par lavage des autres constituants des micelles pour obtenir une puce à protéines. La préparation de cette émulsion peut être effectuée de manière connue et telle que décrite par exemple par Tawfik et Griffiths, Nature Biotechrology, 1998, 16, 652-656. Une émulsion peut également être réalisée en présence d'une solution d'ADN de manière à compartimenter des fragments d'ADN dans des micelles. Chaque micelle est ensuite isolé grâce à un dispositif miniature tel que décrit précédemment puis lysé de manière à libérer, au niveau de chaque microréservoir, le ou les fragments d'ADN qui pourront ensuite être localement transcrits puis traduits de manière à étudier la fonction des protéines ainsi obtenues. Cette forme de mise en _uvre du dispositif de l'invention permet de séparer et de caractériser des protéines fonctionnelles au niveau d'un dispositif miniature tel que décrit précédemment. Selon encore une autre variante de l'invention, les dispositifs miniatures conformes à l' invention peuvent étre utilisés pour fabriquer une puce à protéines aléatoire tout en gardant 1'information de la séquence ADN codant pour la protéine qui aura été synthétisce comme précédemment, sous la forme d'une puce à ADN aléatoire. Pour ce faire, les cellules de la banque sont immobilisces comme décrit ci-dessus au fond des microcuvettes d'une première puce A, sur laquelle on effectue quelques divisions cellulaires. Une copie de la première puce A est réalisée dans une deuxième puce B. par transtert de cellules de manière dirigée des microréservoirs de la puce A vers les microréservoirs correspondant de la puce B. les microréservoirs de la puce A étant éventuellement mis en vis-à-vis avec les microréservoirs de la puce B. sous agitation. La puce A subit ensuite le traitement décrit ci-dessus pour la fabrication d'une puce à ADN aléatoire, tandis que la puce B subit le traitement décrit ci-dessus pour obtenir une puce à protéine aléatoire correspondante. Après identification des microcuvettes positives (soit par un test protéique sur la puce B. soit par un test ADN sur la puce A, on obtient alors directement la séquence de l'ADN sur la puce A ou celle de la protéine correspondante sur la puce B. L'invention a aussi pour objet un procédé de criblage de protéines, recombinantes ou non, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes: a) la mise en contact d'au moins un dispositif miniature (puce mère) tel que défini précédemment avec une solution d'objets biologiques homogéncisée, en particulier avec une solution de culture de micro-organismes, pour permettre la fixation desdits objets biologiques au fond des microcuvettes sur les zones de réception, à raison d'au plus un objet biologique par microcuvette, b) l'élimination éventuelle des objets biologiques non fixés de façon à obtenir un dispositif miniature sur lequel les objets biologiques à isoler sont immobilisés, c) I'introduction dans les microréservoirs d'un mélange réactionnel lO commun contenant tous les réactifs nocessaires à une amplification génomique, ledit mélange réactionnel comprenant notamment au moins une amorce fonctionnalisée par des groupements pyrrole, d) la lyse ou la perméabilisation des objets biologiques fixés au fond des microcuvettes de façon à mettre en contact le matériel génétique qu'ils contiennent avec les réactifs nécessaires à une amplification et permettre ainsi ladite amplification, e) l'introduction dans chaque microréservoir d'un mélange réactionnel contenant au moins une ARN polymérase permettant la transcription des séquences amplifiées en ARN messagers (transcrits), f) I'introduction dans chaque microréservoir d'un mélange réactionnel permettant la traduction des transcrits obtenus à l'étape (e) en protéines correspondantes, - g) le test d'au moins une propriété des protéines obtenues à l'étape (f) par l'introduction dans chaque microréservoir d'un substrat approprié, et éventuellement h) la lyse des objets biologiques si celle-ci n'a pas été effectuée lors de l'étape (d), puis le séquençage des gènes contenus dans les microréservoirs dans lesquelles une réaction positive protéine/substrat a eu lieu. Selon ce procédé de criblage, les étapes (c) et (d) peuvent éventuellement être réalisées de façon simultanée. Lorsque les objets blologiques ont été Iysés à l'étape (d), alors le procédé conforme à l'invention peut comporter une étape supplémentaire consistant à fixer les séquences amplifiées sur une électrode par électropolymérisation, de manière collective. Dans ce cas, une étape de lavage des microréservoirs peut ensuite être effectuée pour éliminer les restes des objets biologiques lysés et éventuellement les séquences amplifiées non fixées sur l'électrode. Également, lorsque les objets biologiques ont été Iysés à l'étape (d), le procédé de criblage conforme à l'invention peut comporter une autre étape supplémentaire consistant à polariser une électrode pour attirer les ARN messagers synthétisés à l'étape (e) au fond des microréservoirs, cette étape de polarisation étant éventuellement suivie d'une étape de lavage des microréservoirs. Le procédé de criblage conforme à l'invention ne nécessite ni l O micropipetage, ni positionnement délicat des objets biologiques à isoler. Ce procédé permet en effet le criblage de protéines sur une matrice ordonnée tout en ne nécessitant pas de pipetage individuel pour créer ladite matrice. Il permet également de limiter le nombre des séquençages à effectuer, seuls les gènes contenus dans les microcuvettes ayant donné une réaction positive protéine/substrat étant séquencés. Selon une forme de réalisation particulièrement préférée de ce procédé, le dispositif utilisé est muni d'un moyen de fermeture permettant de fermer les microréservoirs pendant le déroulement des différentes réactions (lyse ou perméabilisation des objets biologiques, amplification génomique, transcription des séquences amplifiées en ARN messagers, traduction des transcrits en protéines correspondantes, etc). Les mélanges réactionnels permettant la transcription des séquences amplifiées en ARN messagers et la traduction des transcrits en protéines sont ceux classiquement utilisés pour réaliser ces opérations. Ils sont par exemple décrits en détail dans la demande internationale WO 00/09747. Selon une forme de réalisation préférce de l'invention, les étapes (e) et (f) sont réalisées simultanément. Selon une variante avantageuse de ce procédé, et lorsque les objets biologiques ont été lysés à l'étape (d) et que les séquences amplifiées ont été fixées sur une électrode par électropolymérisation, alors les ARN messagers obtenus à l'issue de l'étape (e) peuvent être transférés, par exemple par pipetage collectif, dans un dispositif miniature vierge (puce fille) identique au précédent dans lequel auront lieu les étapes (f) et (g) telles que définies précédemment. Ce transfert permet de préserver l'intégrité des séquences amplifiées dans les microréservoirs du premier dispositif. En effet, les réactifs mis en _uvre au cours de l'étape (f) de traduction contiennent des DNases qui abîment l'ADN des séquences amplifiées interdisant ensuite l'exploitation des informations qu'elles contiennent. Ce transfert peut notamment être effectué au moyen d'un outil négatif à pointes métalliques dans lesquelles on applique un champ électrique de façon l O à attirer les ARN messagers. Ces derniers seront alors déposés dans les microréservoirs de la puce fille par dépolarisation des pointes métalliques de cet outil. Les ARN messagers ainsi transférés sur la puce fille pourront alors étre attirés sur une électrode de la puce fille au moyen de l'application d'un champ électrique. La copie puce mère/puce fille peut également être réalisée suite à l'étape (b) et après quelques divisions cellulaires en présence d'un milieu de culture approprié, par la simple mise en vis-à-vis du dispositif miniature utilisé (puce mère) avec un autre dispositif miniature vierge du méme type (puce fille). La puce mère et la puce fille subissent alors toutes deux les étapes (c) et (d) telles que décrites ci- dessus, tandis que seule la puce fille subit ensuite l'étape (e). Lorsqu'une puce mère et une puce fille sont utilisées conformément à l'invention, des dispositifs tels que celui représenté par la figure 2, c'est à dire comprenant une première électrode intégrée au dispositif et une deuxième électrode externe à celui-ci, peuvent être utilisés. La puce fille reçoit alors collectivement le mélange réactionnel contenant les réactifs nécessaires à la traduction des ARN messagers en protéines correspondantes (acides aminés marqués) et des vésicules porteurs d'un substrat réactif, tels que par exemple des liposomes, pour tester l'activité des protéines synthétisces. Une fois que la réaction de traduction des protéines a eu lieu, une première vérification de lasynthèse des protéines est effectuée microréservoir par microréservoir, par exemple par mesure en fluorescence polarisée, afin de discréminer le rayonnement émis en fonction de la taille des molécules (protéines/acides aminés marqués). Le substrat réactif pour tester l'activité des protéines synthétisées est alors libéré localement dans chaque microréservoir par éclatement des vésicules sous l 'action d'une sonication. Ce substrat est ensuite modifié ou non par l 'acti on des protéines synthétisées et la modification de ce substrat est détectée par tout moyen approprié. Ce procédé permet donc de trouver quel microréservoir a généré la protéine responsable de la modification du substrat testé. Il suffit ensuite de séquencer l O la séquence amplifiée fixée dans le microréservoir (microréservoir positif) correspondant de la puce mère. La puce mère subit alors un nouveau cycle d'amplification génomique en utilisant des amorces ne contenant pas de fonction pyrroles. Le contenu des microréservoirs positifs peut ensuite être pipeté lS localement et distribué dans des tubes individuels o un séquençage classique pourra étre réalisé. Lorsque les dispositifs miniatures tels que définis précédemment sont utilisés pour effectuer l'analyse d'une banque de transcrits, ils permettent de déterminer quels sont les gènes qui subissent un différentiel d'expression en réponse à un stress tel que par exemple un choc thermique, une exposition à une drogue, une pathologie. L'invention a donc également pour objet un procédé d'analyse d'une banque de transcrits caractéri sé par le fait qu' il comprend l es étap es a) et b) dé crite s précédemment (fixation des objets biologiques sur un dispositif miniature et lavage des objets biologiques non fixés) ainsi qu'une étape de détection d'un gène ayant subi une différence d'expression. Ce procédé est de préférence caractérisé par le fait que dans une première étape, on effectue les sous-étapes suivantes consistant: - à isoler des objets biologiques A sur un premier dispositif miniature tel que défini précédemment (puce mère A), - à laver les objets biologiques A non fixés de façon à obtenir un dispositif o sont immobilisés les objets biologiques A à isoler, puis - à extraire les ARNs messagers des objets biologiques A (cellules A dites stressées), par exemple en effectuant une Iyse des différents objets isolés; - à soumettre le contenu cellulaire à un traitement à la DNase, - à transférer les ARNs messagers extraits dans les microréservoirs d'un dispositif neuf (puce fille A), par exemple au moyen d'un outil négatif à pointes métalliques dans lequel on applique temporairement un champ électrique de façon à attirer puis à déposer les ARNs messagers, - à attirer les ARNs messagers sur une électrode de la puce fille A au moyen d'un champ électrique, l 0 - à synthétiser les ADNc correspondants, - à marquer les ADNc ainsi synthétisés à l'aide d'un segment nucléotidique comportant au moins un promoteur de transcription in vitro et au moins un segment perrnettant leur fixation spécifique dans un microréservoir de la puce fille A. l 5 Chaque brin d'ADNc marqué est ainsi fixé au niveau des microréservoirs de la puce fille A. Ces mêmes opérations peuvent être effectuées à partir d'objets biologiques B (cellules identiques aux cellules A, mais non stressées). De la même façon les d'ADNc correspondants seront fixés au niveau des microréservoirs d'une puce fille B. Dans une deuxième étape, la puce fille A est alors plongée dans une solution contenant les brins non marqués des ADNc de la cellule B. Si un brin non marqué s'hybride sur son brin complémentaire sur la puce fille A, il permet de reconstituer un promoteur de transcription double brin fonctionnel. La réalisation d'une étape de transcription in vifro dans chaque microréservoir, en utilisant des nucléotides fluorescents, permet de mettre en évidence quel microréservoir contient un ADNc de la cellule B capable de s'hybrider sur un ADNc de la cellule A. En parallèle la puce fille B est plongée dans une solution contenant les brins non marqués des ADNc de la cellule A et la même révélation est alors réalisée. On met ainsi en évidence quel microréservoir contient un ADNc de la cellule A capable de sthyDrider sur un ADNc de la cellule B. Dans une troisième étape, les puces filles A et B sont traitées pour * éliminer les ARNm produits, ainsi que les ADNc non marqués. Les puces filles A et B sont ensuite plongées dans une solution contenant les brins non marqués des ADNc des cellules A et B respectivement, et une nouvelle révélation par transcription est réalisée. Le signal obtenu dans chaque microréservoir est alors comparé au signal qui a été obtenu à l'étape précédente, et le matériel génétique présent dans les microréservoirs négatifs à l'issue de la deuxième étape et positifs à l'issue de la troisième étape est récupéré pour étre caractérisé par exemple par la réalisation d'une transcription inverse afin de séquencer les gènes ayant subi un différentiel d' expre s si on. Les dispositifs miniatures tels que décrits précédemment peuvent également être utilisés pour la réalisation d'antivirogrammes. Les antivirogrammes consistent à définir les inDibiteurs d'une euzyme virale indispensable au cycle de multiplication d'un virus, permettant ainsi l'identification de principes actifs virucides, dans une forme de mise en _uvre correspondant à l'infection de cellules par une forme unique dun virus. L'invention a donc également pour objet un procédé de réalisation d'un antivirogramme, caractérisé par le fait qu'il comprend les étapes suivantes consistant à: - isoler des cellules potentiellement infectées ou infectées sur un dispositif miniature tel que défini précédemment, - à Iyser lesdites cellules afin de libérer le gène codant pour l'enzyme indispensable au cycle de multiplication du virus, - à amplifier ledit gène par exemple par toute technique connue de l'homme du métier, - à fixer l es produits d' amp lification au niveau d'une deuxi ème électrode; des polymères de copolymérisation seront par exemple utilisés à cet effet, - à éliminer éventuellement par lavage les autres constituants des cellules de manière à ne retenir que les produits d'amplification, - à transcrire puis traduire en protéines lesdits produits d'amplification au niveau des microréservoirs, - à révéler l'activité des protéines obtenues en présence d'inhibiteurs identiques ou non au niveau de chaque microréservoir de manière à mettre en évidence les inhibiteurs capables d'inLiber in vtro une enzyme virale indispensable à la multiplication d'un virus. Ce type d'expérience permet également d'étudier la représentativité de l' enzyme dans le cas o plusieurs isoformes de cette dernière existeraient. Les dispositifs miniatures tels que décrits précédemment peuvent également être utilisés selon une autre forme de mise en _uvre d'un antivirogramme. Dans ce cas, les cellules d'une banque transformées avec les gènes codant pour les différentes isoformes d'une enzyme virale indispensable au cycle de multiplication d'un virus sont isolées grâce à un dispositif miniature tel que décrit ci dessus. Seules les cellules recombinantes sont isolées (soit par tri de la banque tel que décrit ci-avant, soit par sélection préalable sur milieu sélectif). Les cellules non retenues au niveau du dispositif sont éliminées par lavage. Les protéines codant pour l'enzyme virale peuvent ensuite être exprimées et étudiées comme préalablement pour donner un antivirogramme de l'enzyme virale étudiée. REVENDICATIONS 1. Utilisation d'un dispositif miniature de séparation et/ou d'isolement d'objets biologiques, comportant au moins une première électrode intégrce au dispositif et au moins une deuxième électrode intogrée ou externe au dispositif, constitué par une structure pourvue d'une matrice de microcuvettes réactionnelles, chaque microcuvette comportant un fond, sur au moins une partie duquel est fixé un réactif apte à fixer l'objet biologique à isoler de façon à constituer une zone de réception, caractérisé en ce que ledit fond est dépourvu de trou et que la surface maximale dudit fond de chaque microcuvette est définie de manière à isoler un objet biologique unique, ladite structure étant reliée à un circuit d'alimentation pour créer une différence de potentiel entre ladite première électrode et ladite deuxième électrode, pour des applications lices à la biologie moléculaire. 2. Utilisation selon la revendication l, pour la fabrication de puces à acides nucléiques (puces à ADN), la fabrication de puces à protéines, le tri de banques génomiques, l'analyse de banques de transcrits, la mesure d'une variation de l'activité d'une protéine fonctionnelle, la réalisation d'antivirogrammes et pour le criblage de protéines ou le criblage pharmaceutique. 3. Utilisation selon la revendication 1 ou 2, caractérisée par le fait que la surface maximale du fond de chaque microcuvette est inférieure ou égale à deux fois la plus petite surface de l'objet biologique à isoler. 4. Utilisation selon la revendication 3, caractérisce par le fait que la surface dudit fond est inférieure ou égale à la plus petite surface de l'objet biologique à isoler. 5. Utilisation selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée par le fait que la surface maximale du fond de chaque microcuvette est comprise entre 1 pm2 et 400 m2. 6. Utilisation selon la revendication 5, caractérisée par le fait que la surface maximale du fond de chaque microcuvette est comprise entre l et 50 1lm2. 7. Utilisation selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée par le fait que la matrice de microcuvettes réactionnelles du dispositif est surmontée au moins en partie d'une ou plusieurs couches de matériaux isolants et/ou d'une grille en plastique biocompatible rapportée, de fa,con à former une matrice de ,. mcroreservolrs. 8. Utilisation selon la revendication 7, caractérisée par le fait que les matériaux isolants sont choisis parmi les polyimides et les résines. 9. Utilisation selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée par le fait que la longueur et/ou la largeur des microréservoirs est comprise entre 5 et 500 1lm. 10. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 7 à 9, caractérisée par le fait que le dispositif comprend au moins deux couches de matériaux isolants, et qu'une desdites couches ne fait pas partie intégrante du dispositif mais se présente sous la forme d'une pièce rapportée amovible venant recouvrir au moins en partie ledit dispositif. 11. Utilisation selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée par le fait qu'une face de la première électrode intégrée au dispositif constitue le fond des microcuvettes. 12. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 10, caractérisce par le fait que le fond des microcuvettes est constitué par une couche en verre, en plastique ou en silicium. 13. Utilisation selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée par le fait que la deuxième électrode est intégrée au dispositif et qu'elle est située dans un plan espacé du fond des microcuvettes. 14. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 à 12, caractérisée par le fait que la deuxième électrode est externe au dispositif et qutelle est solidaire d'un capot ou d'un couvercle. 15. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 11, 13 ou 14, caractérisée par le fait que le réactif est choisi parmi les copolymères conducteurs sur lesquels sont fixés des protéines, des peptides ou toutes molécules spécifiques du type d'objet biologique à fixer. 16. Utilisation selon la revendication 15, caractérisée par le fait que les copolymères conducteurs sont choisis parmi les polypyrroles. 17. Utilisation selon la revendication 15 ou 16, caractérisée par le fait que le réactif est un copolymère pyrrole-biotine-streptavidine-biotinemolécule spécifique. 18. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 12 à 14, caractérisée par le fait que le réactif est choisi parmi des polymères non spécifiques du type d'objet biologique à fixer. 19. Utilisation selon la revendication 18, caractérisée par le fait que lesdits polymères sont de la poly-L-lysine. 20. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 12 à 14, caractérisée par le fait que le réactif est une protéine ou un peptide et que ladite couche en verre, en plastique ou en silicium est recouverte d'une couche de silane modifié par des fonctions -NHS ou aldéhyde sur lesquelles est fixé ledit réactif. 21. Utilisation selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée par le fait que le dispositif est équipé d'un moyen de 1 5 fermeture. 22. Utilisation selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée par le fait que les objets biologiques à isoler sont des cellules procaryotes ou eucaryotes, des virus, des liposomes ou des microalgues. 23. Utilisation selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée par le fait que les objets biologiques sont choisis parmi les bactéries issues d'une banque de séquences génomiques. 24. Procédé de séparation et/ou d'isolement d'objets biologiques pour l'obtention de puces à acides nucléiques ou à protéines ou pour la détection de protéines fonctionnelles, caractérisé en ce qu'il comprend au moins les étapes a) et b) suivantes: a) la mise en contact d'au moins un dispositif miniature de séparation et/ou d'isolement d'objets biologiques, comportant au moins une première électrode intogrée au dispositif et au moins une deuxième électrode intogrée ou externe au dispositif, constitué par une structure pourvue d'une matrice de microcuvettes réactionnelles, chaque microcuvette comportant un fond, dépourvu de trou, sur au moins une partie duquel est fixé un réactif apte à fixer l'objet biologique à isoler de façon à constituer une zone de réception, la surface maximale dudit fond de chaque microcuvette étant définie de manière à isoler un objet biologique unique, ladite structure étant reliée à un circuit d'alimentation pour créer une différence de potentiel entre ladite première électrode et ladite deuxième électrode, avec une solution d'objets biologiques homogénéisée, pour permettre la fixation desdits objets biologiques au S fond des microcuvettes sur les zones de réception, à raison d'au plus un objet biologique par microcuvette, b) l'élimination des objets biologiques non fixés de fa$on à obtenir un dispositif miniature sur lequel les objets biologiques à isoler sont immobilisés. 25. Procédé selon la revendication 24, caractérisé en ce qu'il comporte une étape préliminaire à l'étape a) consistant à transformer les objets biologiques par un vecteur de clonage portant un gène qui code pour une protéine spécifique qui sera présente en surface des objets biologiques de telle sorte que la fixation des objets blologiques se fera par une interaction entre cette protéine et un réactif spécifique de ladite protéine et/ou par clonage d'un fragment d'ADN dans un vecteur, ledit fragment empêchant l'expression d'un gène codant pour une protéine toxique pour l'objet biologique recombinant. 26. Procédé selon la revendication 24 ou 25, caractérisé en ce que l'on utilise un dispositif comportant des microréservoirs et qu'il comporte une étape au cours de laquelle le matériel génétique des objets biologiques est libéré dans lesdits microréservoirs. 27. Procédé selon la revendication 24 ou 25, caractérisé en ce que l'on utilise un dispositif comportant des microréservoirs et une deuxième électrode interne ou externe adaptée à la perméabilisation des objets biologiques fixés. 28. Procédé selon l'une quelconque des revendications 24 à 97, caractérisé en ce qu'il est utilisé pour l'obtention de puces à acides nucléiques et qu'il comporte une étape au cours de laquelle le matériel génétique des objets isolés est amplifié pour obtenir des séquences amplifiées. 29. Procédé selon la revendication 28, caractérisé en ce que les séquences amplifiées sont fixées par électropolymérisation sur une deuxième électrode du dispositif utilisé. 30. Procédé selon l'une quelconque des revendications 24 à 27, caractérisé en ce qu'il est utilisé pour l'obtention de puces à protéines ou pour la détection de protéines fonctionnelles et qu'il comprend, après l'étape b), une étape de transcription et de traduction du matériel génétique des objets biologiques isolés en protéines. 31. Procédé selon la revendication 30, caractérisé en ce qu'il comprend une étape de fixation desdites protéines sur une deuxième électrode du dispositif utilisé. 32. Procédé selon la revendication 30 ou 31, caractérisé en ce qu'il est utilisé pour la détection de protéines fonctionnelles et qu' il comprend, après l' étape de traduction, une étape de révélation d'au moins une propriété des protéines isolées. 33. Procédé selon la revendication 30 ou 31, caractérisé en ce qu'il comprend une étape de mesure de la variation de l'activité desdites protéines fonctionnelles consistant à tester l'effet de différentes molécules sur l'activité desdites protéines fonctionnelles. 34. Procédé selon l'une quelcouque des revendications 30 à 32, caractérisé en ce qu'il est utilisé pour l'obtention de puces à protéines recombinantes et qu'il comporte, avant l'étape a), une étape de transformation des objets biologiques par un vecteur de clonage afin de permettre le marquage des protéines recombinantes par un épitope universel. 35. Procédé d'analyse d'une banque de transcrit caractérisé en ce qu'il comprend au moins les étapes a) et b) telles que définies à la revendication 24