Brevet FR2812656A1 — publié le 20020208

ACIDES NUCLEIQUES ET PROTEINES D'E. COLI PATHOGENES, ET LEURS UTILISATIONS. La présente invention est relative à de nouveaux marqueurs de pathogénicité d'Escherichia coli, utilisables notamment pour la détection des Escherichia coli pathogènes de sérotype 0157 productrices de shiga-toxines. Escherichia coli (E. coli) est une bactérie ubiquitaire, fréquemment isolée dans les laboratoires de microbiologie médicale ou alimentaire, et présente à l'état normal dans la flore intestinale de l'homme. Certaines souches sont toutefois pathogènes, et associées à de nombreuses infections intestinales et non-intestinales. L'identification des différentes souches d'E. coli repose de façon classique, sur le typage sérologique de leurs antigènes 0 (antigène somatique) et H (antigène flagellaire) par des méthodes immunologiques. Les sérotypes d'E. coli pathogènes les plus courants ont été classés en 5 groupes principaux, en fonction de leur mécanisme d'infection du tube digestif : EPEC, pour : "enteropathogenic E. coli", qui regroupe les entéropathogènes classiques, - ETEC, pour : "enterotoxigenic E. coli", qui regroupe les E. coli produisant une toxine stable ou sensible à la chaleur - EAGGEC, pour "enteroagregative E. coli", qui regroupe les E. coli qui se caractérisent par un profil particulier d'adhésion appelé "adhésion agrégative", EIEC, pour : "enteroinvasive E. coli", qui regroupe les E. coli qui miment la capacité de Shigella à envahir et à se multiplier dans les cellules de l'épithélium intestinal et - VTEC, pour : "verotoxin producing E. coli", ou STEC "shiga-toxin producing E. coli", qui regroupe les E. coli produisant des cytotoxines, dénommées "Shiga-like toxins", du fait de leur analogie avec la toxine sécrétée par Shigella dysenteriae de type 1 ou également vérotoxines (VT), du fait de leur activité toxique sur les cellules Véro. Parmi les souches d'E. coli pathogènes, les colibacilles producteurs de shiga-toxines dénommés STEC, sont des microorganismes émergents de plus en plus reconnus comme responsables de toxi-infections alimentaires (GANNON et al., 1993, J. Clin. Microbiol. 31 : 1268-1274 ; BEGUM D. et al., 1993, J. Clin. Microbiol. 31 : (12) 3153-3156). Chez l'homme l'infection par des STEC se traduit par des symptômes plus ou moins graves qui peuvent aller d'une simple diarrhée, à une colite hémorragique, jusqu'à un syndrome hémolytique et urémique (SHU) ou un purpura thrombotique thrombocytopénique (PTT), et peut parfois être fatale (GRIFFIN et al., 1991, Epidemiol. Rev. 13 : 60-98 ; NATARO et al., 1998, Microbiol. Immunol. 42 :371-376 ; PATON et al., 1998, Clin. Microbiol. Rev. 11 : 450-479). Le syndrome hémolytique et urémique survient principalement chez les jeunes enfants ; il représente environ 9% des infections à STEC diagnostiquées aux EtatsUnis. Il est par ailleurs la principale cause d'insuffisance rénale aigue chez l'enfant, et la létalité observée est de l'ordre de 3 à 5/1000. En France, des études récentes ont montré que l'incidence annuelle moyenne du SHU est de 0,7/10000 chez les enfants de moins de 15 ans et de 1,8/10000 chez les enfants de moins de 5 ans (DECLUDT et al., 2000, Epidemiol. Infect. 124 : 215-220). Les STEC sont également impliqués chez l'animal, dans des infections digestives plus ou moins graves. Les symptômes observés sont notamment des diarrhées et des dysenteries chez les veaux ou la maladie de l'#dème chez le porc. En outre, des bovins, porteurs sains, pourraient jouer un rôle dans la transmission des STEC à l'homme, par l'intermédiaire de l'eau ou de denrées alimentaires d'origine animale contaminées (viande, lait cru et produits laitiers à base de lait cru), (BONNET et al., 1998, J. Clin. Microbiol. 36 :1777-1780 ; PRADEL et al., 2000, J. Clin. Microbiol. 38 : 1023-1031). Initialement, un seul sérotype d'E.coli avait été associé au SHU : il s'agit du sérotype 0157:H7. Il a été ultérieurement observé que d'autres sérotypes notamment 0157:H-, 026:H11, 0111:H- et 0103:H2 pouvaient être impliqués dans des infections à STEC (BRIAN et al., 1992, J. Clin. Microbiol. 30 : 1801-1806). Parmi ces sérotypes, 0157 est le sérotype majeur, impliqué dans 75 à 80% des syndromes hémolytiques et urémiques (DECLUDT et al., précité). Les shiga-toxines produites par les STEC, notamment SLT1 (VT1), SLT2 (VT2) et leurs variants VT2 vha, VT2 vhb, SLTII-v (VTE) et SLT II-va (VTE-va) (ZAWLIN et al., 1993, Microbiol. Immunol., 37 : 543-548), ont été identifiés comme les principaux facteurs de pathogénicité impliqués dans ces infections (CALDERWOOD et al., 1987, Proc. Nat. Acad. Sci. 84 :4364-4368). Cependant, les shiga-toxines ne sont pas responsables à elles seules, de la pathogénicité des STEC ; d'autres facteurs bactériens de virulence pourraient également jouer un rôle dans le pouvoir pathogène de ces colibacilles : - le locus d'effacement entérocytaire (LEE) qui code des protéines impliquées dans l'adhésion des bactéries et l'altération du cytosquelette des cellules intestinales, notamment l'intimine codée par le gène eae (BEEBAKHEE et al., 1992, FEMS Microbiol. Lett. 70 : 63-68 ; Mc DANIEL et al., 1995, Proc. Nat. Acad., Sci. 92 :1664-1668 ; Mc DANIEL et al., 1997, Mol. Microbiol. 23 : 399-407), - le gène efa 1 (EHEC factor for adherence) a été décrit comme un facteur qui contribue à la capacité d'adhésion de la bactérie (NICHOLLS et al., 2000, Mol. Microbiol., 35 : 275-288), et - un plasmide de 90 kb (BURLAND et al., 1998, Nucleic Acids Res., 26 : 4196-4204), qui code des facteurs de virulence potentiels tels qu'une entérohémolysine (SCHMIDT et al., 1995, Infect. Immun., 63 : 1055-1061 ; SCHMIDT et al., 1996, Microbiol., 142 : 907-914) ), une catalase-peroxydase (BRUNDER et al., 1998, Microbiol., 142 : 3305-3315), une sérine-protéase (BRUNDER et al., 1997, Mol. Mirobiol., 24, 767-778) et un système de sécrétion de type II (SCHMIDT et al., 1997, FEMS Microbiol. Letter, 148 : 265-272). Pour prévenir les pathologies associées aux colibacilles producteurs de shiga-toxines (STEC) et en particulier les pathologies les plus graves (colite hémorragique, SHU, PTT) associées aux plus pathogènes d'entre eux, il est nécessaire de disposer de moyens de détection de ces colibacilles, afin d'être en mesure de contrôler systématiquement l'eau et les aliments susceptibles d'être contaminés, et en particulier les produits frais d'origine animale (viande, lait cru et produits laitiers à base de lait cru) . Ce contrôle implique la détection sensible et spécifique des STEC responsables de ces pathologies et notamment des STEC de sérotype 0157. Cette détection est complexe du fait que, comme mentionné ci-dessus, la pathogénicité des STEC n'est pas simplement liée à un sérotype particulier, mais qu'elle résulte de l'association d'un certain nombre de facteurs de virulence dont la combinaison exacte n'est pas connue. En outre, certains facteurs de virulence, sont communs aux STEC et à d'autres groupes d'E.coli pathogènes ou à d'autres espèces de bactéries, ce qui constitue un problème supplémentaire pour la détection spécifique des STEC et notamment des STEC de sérotype 0157. Par exemple, le plasmide de virulence de 90 kb est présent chez des STEC pathogènes d'autres sérotypes (BONNET et al., précité), et le locus LEE est présent à la fois chez des STEC pathogènes de différents sérotypes (PRADEL et al., précité) et chez les EPEC, notamment chez 0127:H6 (PERNA et al., 1998, Infect. Immun., 66 : 3810-3817 ; PRADEL et al., précité). Des tests de cytotoxicité et différentes méthodes biochimiques, immunologiques (ELISA) ou génétiques ont été proposées pour détecter les STEC (NATARO et al., 1998, Clin. Microbiol. Rev., 11 :142-201 ; PATON et al., 1998, Clin. Microbiol. Rev., 11 :450-479 ; FENG et al., 1993, Mol. Cell. Probes, 7 : 151-154 ; HUCK et al., Int. J. Food Microbiol., 25 : 277-287). # Les tests de cytotoxicité sur des cultures de cellules constituent la méthode de référence utilisée en hygiène alimentaire pour détecter la présence de bactéries productrices de shiga-toxines ou vérotoxines. Le principe de ces tests est basé sur la cytopathogénicité des vérotoxines sur des cellules de rein de singe vert d'Afrique. Par la suite, une confirmation des types antigéniques de vérotoxine est nécessaire à l'aide d'anticorps anti-VTl et anti-VT2. Cette technique a l'avantage d'être très sensible, cependant elle n'est pas spécifique des colibacilles producteurs de shiga-toxines de sérotype 0157. En outre, une série de transferts en milieux sélectifs est nécessaire afin de favoriser le développement des bactéries vérotoxiques préalablement au dosage des toxines sur une culture de cellules ; il faut compter 5 à 6 jours avant d'obtenir les premiers résultats, et les coûts sont élevés. Ce test ne constitue donc pas une méthode de routine utilisable dans l'industrie agro-alimentaire. # Les méthodes biochimiques utilisent les caractéristiques de la majorité des E. coli 0157:H7 et 0157:H-, qui ne fermentent pas le sorbitol en 24 heures, et qui en outre ne produisent pas de P-glucuronidase. Les E. coli 0157:H7 et 0157:H' apparaissent sous forme de colonies blanches sur des géloses au sorbitol, alors que les colibacilles producteurs de shiga-toxines d'autres sérotypes (026,0111 et 0103) et les nombreux colibacilles nonpathogènes, qui sont capables de fermenter le sorbitol, apparaissent sous forme de colonies pigmentées. Ces méthodes sont toutefois insuffisantes car il existe des mutants atypiques d'E. coli 0157:H7 et 0157:H- qui sont capables de fermenter le sorbitol (GUNZER et al., 1992, J. Clin. Microbiol., 30 : 1807-1810 ; KARCH et al., 1997, J. Food, Prot., 60 :1454-1457). # Les méthodes immunologiques de type ELISA reposent sur la détection des antigènes 0 et H ou des shigatoxines (VT1 et VT2) à l'aide d'anticorps spécifiques. Les tests immunologiques actuellement disponibles ne sont pas satisfaisants ; en effet, d'autres bactéries telles que Citrobacter freundii, Salmonella 0 du groupe N et Hafnia alvei présentent une réactivité croisée vis-à vis des sérums anti-0157 utilisés (BETTELHEIM et al., 1993, J. Clin. Microbiol., 31 : 760-761 ; BORCZYK et al., 1987, Int. J. Food Microbiol., 4 : 347-349 ; CHART et al., 1992, Epidemiol. Infect., 108 : 77-85 ; SHIMADA et al., 1992, Curr. Microbiol., 25 : 215-217). En outre, la plupart des tests immunologiques disponibles sont limités à la détection de l'antigène 0157 et ne permettent pas de différencier les STEC 0157 des E. coli non pathogènes de sérotype 0157. Enfin, ces méthodes sont en général trop peu sensibles ou trop peu spécifiques pour permettre une détection dans les aliments. # Des méthodes d'amplification en chaîne par polymérase (PCR), permettant la détection spécifique de gènes codant des facteurs bactériens impliqués dans la virulence ont été proposés. L'amplification des gènes suivants a été rapportée : - les gènes de shiga-toxines (stx), (CHEN et al., 1998, Appl. Environ. Microbiol., 64 :147-152 ; Demande EP 0 864 657 au nom du CNEVA ; GANNON et al., 1992, Appl. Environ. Microbiol., 58 : 3809-3818 ; JACKSON, 1991 ; J. Clin. Microbiol., 29 : 1910-1914 ; KARCH et al., 1989, J. Clin. Microbiol., 27 : 2751-2757 ; LIN et al., 1993, Microbiol. Immunol., 37 : 543-548 ; POLLARD et al., J. Clin. Microbiol., 1990, 28 : 540-545 ; POLLARD, 1990, J. Infect. Dis., 162, 1195-1198 ; READ et al., 1992, Mol. Cell. Probes, 6 : 153- 161), - le gène de l'intimine (eae) porté par le locus LEE (SANDHU et al., 1996, Epidemiol. Infect., 116 : 1-7 ; WILLSHAW et al., 1994, J. Clin. Microbiol., 32 : 897-902), - le gène de l'hémolysine codé par le plasmide de 90 kb (E-hlya), (SCHMIDT et al., 1995, précité), - des gènes impliqués dans la biosynthèse de l'antigène 0 (locus rfb), (DESMARCHELIER et al., 1998, J. Clin. Microbiol., 36 : 1801-1804 ; MAURER et al., 1999, Appl. Environ. Microbiol., 65 : 2954-2960) et - le gène codant l'antigène flagellaire H7 (fliCh7), (FIELDS et al., J. Clin. Microbiol., 1997, 35 : 1066-1070). Ces méthodes sont plus sensibles et plus spécifiques que les méthodes biochimiques ou immunologiques. Cependant, les STEC 0157 ne peuvent pas être identifiés à l'aide d'une seule réaction PCR ciblant l'un de ces gènes. En effet, les antigènes somatiques 0157 et flagellaire H7, qui peuvent être portés par des souches d'E. coli non pathogènes ne constituent pas à eux seuls des marqueurs de pathogénicité. En outre, les gènes de vérotoxines sont par définition portés par toutes les souches de STEC ; les facteurs de virulence décrits sur le plasmide de 90 kb, (entérohémolysine, catalase péroxydase, sérine protéase) sont présents chez des STEC de différents sérotypes (BONNET et al., précité) et un homologue du locus LEE est présent à la fois chez les STEC de différents sérotypes (PRADEL et al., précité) et chez les EPEC (PERNA et al., précité). Par conséquent, la mise en évidence d'un seul de ces gènes de virulence ne suffit pas à identifier un STEC de sérotype 0157. Des tests permettant l'amplification simultanée de plusieurs gènes en une seule réaction (PCR-multiplex) ont été proposés (CEBULA et al., 1995, J. Clin. Microbiol., 33 : 1048 ; DENG et al., 1996, J. Food Prot., 59 : 570-576 ; FRATAMICO et al., 1995, J. Clin. Microbiol., 33 : 2188-2191 ; GANNON et al., 1997, J. Clin. Microbiol., 35 : 656-662 ; NAGANO et al., 1998, Microbiol. Immunol., 42 : 371-376 ; PATON et al., 1998, J. Clin. Microbiol., 36 : 598-602). Ces techniques qui sont adaptées à la détection d'une souche bactérienne isolée ne sont pas utilisables pour l'analyse d'échantillons biologiques complexes, tels que des aliments ou des selles, qui sont susceptibles de contenir un mélange de bactéries. En effet, comme rapporté par DENG et al. (précité), la PCR-multiplex ne permet pas de conclure si les signaux correspondants aux différents gènes détectés proviennent d'une seule souche bactérienne, ou bien de l'effet additif de gènes présents dans des souches différentes de bactéries. Cet inconvénient majeur, qui implique l'isolement systématique de chaque souche afin de vérifier que les différents gènes amplifiés par PCR sont bien présents dans la même souche, n'est pas adapté au diagnostic de routine en laboratoire d'hygiène alimentaire ou d'analyses médicales. La comparaison de la séquence nucléotidique de certains gènes communs aux STEC de sérotype 0157 et à d'autres E. coli pathogènes a permis d'identifier des mutations ponctuelles. Ainsi certains auteurs ont proposé des amorces spécifiques ciblant les gènes portés par les STEC 0157 qui permettent leur détection en une seule réaction PCR. Ainsi, l'amplification des régions suivantes a été rapportée : la région 3' du gène eae (LOUIE et al., 1994, Epidemiol. Infect., 112 : 449-461), la région immédiatement adjacente à la région 5' du gène eae (MENG et al., 1996, Int. J. Food Microbiol., 32, 103-113 ; MENG et al'., 1997, Lett. Appl. Microbiol., 24 : 172-176 ; ZHAO et al., 1995, FEMS Microbiol. Lett., 133 : 35-39) ou le gène H7 (WANG et al., 2000, J. Clin. Microbiol., 38 : 1786-1790). Il apparaît donc qu'on ne dispose à l'heure actuelle que de très peu de marqueurs spécifiques et faciles à mettre en #uvre pour détecter les E. coli pathogènes, et notamment les STEC de sérotype 0157. Les Inventeurs ont identifié dans des souches d'E. coli pathogènes, notamment dans tous les colibacilles pathogènes de sérotype 0157 producteurs de shiga-toxines, la présence d'un insert d'acide nucléique représentant un nouveau locus, absent des souches non-pathogènes. Ce locus est inséré entre les positions 93848 et 93849 de la séquence du génome d'E.coli K12 (GenBank U82664) ; site d'insertion est précisément situé entre les codons stop de deux phases ouvertes de lecture (Genbank AAB40241 et Genbank AAB40242) en orientation opposée, qui dans la séquence génomique des souches d'E. coli non-pathogènes comme la souche type K12 sont directement adjacentes. Les Inventeurs ont également constaté la présence d'un locus similaire, inséré à la même position, chez des souches d'E.coli pathogènes, appartenant à des sérotypes autres que 0157. En revanche, ils n'ont observé aucune insertion à cette position chez l'ensemble des souches nonpathogènes qui ont été testées. La présence d'un insert à cette position constitue donc un nouveau marqueur génétique de virulence utile pour la détection de souches d'E.coli pathogènes. Les séquences d'acide nucléiques issues d'un tel insert constituent également des marqueurs utiles pour la détection de souches d'E.coli pathogènes, et en particulier pour la détection spécifique des souches de bactéries pathogènes portant ledit insert ; exemple, des séquences d'acide nucléiques issues de l'insert présent dans une souche de sérotype 0157 productrice de shiga-toxines permettent un détection spécifique de l'ensemble des E.coli de sérotype 0157 produisant des shiga-toxines. En conséquence, la présente invention a pour objet une molécule d'acide nucléique issue d'une souche pathogène d'E. coli, caractérisée en ce qu'elle est sélectionnée dans le groupe constitué par : a) une molécule d'acide nucléique représentant un locus inséré dans le génome de ladite souche pathogène, à l'emplacement dudit génome correspondant à celui situé chez E.coli K12, entre les positions 93848 et 93849 de la séquence GenBank U82664 ; b) une molécule d'acide nucléique comprenant la molécule a) définie ci-dessus, et entre 1 et 2500 pb de la séquence en amont du site d'insertion de ladite molécule, et/ou entre 1 et 2500 pb en aval du site d'insertion de ladite molécule. c) une molécule d'acide nucléique constituant un fragment d'au moins 15 pb, de préférence d'au moins 25 à 30 pb, de la molécule a) ci-dessus ; d) une molécule d'acide nucléique constituant un fragment d'au moins 15 pb, de préférence d'au moins 25 à 30 pb, de la molécule b) ci-dessus, ledit fragment comprenant au moins une portion de la molécule a) et au moins une portion de la séquence en amont du site d'insertion de ladite molécule a), ou au moins une portion de la séquence en aval du site d'insertion de ladite molécule a). Des molécules d'acide nucléique conformes à l'invention peuvent en particulier être issues du génome d'une bactérie pathogène de l'espèce Escherichia coli, choisie parmi les E.coli STEC de sérotype 0157,077, 079, ou 0145, les Escherichia coli STEC ou EPEC de sérotype 055, et les Escherichia coli EPEC de sérotype 0127. Par exemple, des molécules d'acide nucléique conformes à l'invention issues du génome d'E.coli 0157:H7, sont représentées dans la liste de séquences en annexe sous respectivement les numéros SEQ ID NO : 1, SEQ ID NO : 2, SEQ ID NO : 11 à 17, SEQ 19, SEQ ID No : 21 et SEQ ID NO : 23. La présente invention a également pour objet des molécules d'acide nucléique capables de s'hybrider spécifiquement, en conditions stringentes, avec l'une quelconque des molécules a) à d) ci-dessus. Ceci englobe notamment des oligonucléotides utilisables comme amorces d'amplification pour l'obtention d'une séquence d'acide nucléique conforme à l'invention, ou comme sondes pour la détection de ladite séquence, et en particulier les oligonucléotides P388L, P388M, P388G, P388D, P388F, P388C et P388P, correspondant respectivement aux séquences SEQ ID NO :3 à 9 dans la liste de séquences en annexe. Les oligonucléotides P388M, P388G, P388D, P388F et P388C sont en particulier utilisables comme sondes d'hybridation moléculaire, utiles pour la détection, d'une molécule d'acide nucléique a) conforme à l'invention issue du génome d'une bactérie E. coli STEC de sérotype 0157. La présente invention englobe en particulier les couples d'amorces utilisables pour l'amplification d'une molécule d'acide nucléique a) b) c) ou d) conforme à l'invention. La présente invention a en outre pour objet les vecteurs recombinants, et notamment les plasmides recombinants contenant une molécule d'acide nucléique conforme à l'invention. Des molécules d'acide nucléique conformes à l'invention peuvent par exemple être obtenues par amplification en chaîne par polymérase, à partir de l'ADN d'une souche E.coli pathogène comprenant le locus défini cidessus. Notamment ': - une molécule d'acide nucléique a) conforme à l'invention peut être obtenue en utilisant un couple d'amorces d'amplification dont l'une s'hybride comprenant une amorce s'hybridant à chacune des extrémités de la molécule a) - une molécule d'acide nucléique b) conforme à l'invention peut être obtenue en utilisant un couple d'amorces d'amplification comprenant une amorce s'hybridant en amont du site d'insertion de la molécule a) et une amorce s'hybridant en aval du site d'insertion de la molécule a) ; des amorces appropriées peuvent être choisies par l'homme de l'art, respectivement à partir de la séquence de 2500 pb en amont de la position 93848 de la séquence GenBank U82664, et de la séquence de 2500 pb en aval de la position 93849. On utilisera, bien entendu des conditions d'amplification permettant d'amplifier des fragments de grande taille, et comprenant notamment une étape d'extension d'amorces de durée suffisante. Avantageusement, on peut utiliser le couple d'amorces P388L/P388P, qui s'hybride de part et d'autre du site d'insertion d'une molécule a) conforme à l'invention. Ce couple amplifie un fragment de 682 pb lorsque l'amplification est effectuée à partir du génome de la souche type E.coli non pathogène K12, alors qu'il amplifie un fragment de plus grande taille avec des E.coli pathogènes ; il amplifie notamment un fragment de 3316 pb (SEQ ID NO : 11) avec tous les E.coli producteurs de shiga-toxines de sérotype 0157. Une molécule d'acide nucléique c) conforme à l'invention peut être obtenue en utilisant un couple d'amorces s'hybridant avec des séquences internes de la molécule a) Une molécule d'acide nucléique d) conforme à l'invention peut être obtenue en utilisant un couple d'amorces comprenant une amorce s'hybridant avec une séquence interne de la molécule a) et une amorce s'hybridant avec une séquence située en amont du site d'insertion de la molécule a) ou une amorce s'hybridant avec une séquence située en aval du site d'insertion de la molécule a). - On peut avantageusement utiliser un couple d'amorces sélectionné dans le groupe constitué par : P388C/P388D (SEQ ID NO : 8/SEQ ID NO : 6), P388F/P388G (SEQ ID NO : 7/SEQ ID NO : 5), P388F/P388D (SEQ ID NO : 7/SEQ ID NO :6), P388P/P388L (SEQ ID NO :9/SEQ ID NO :3), P388L/P388M (SEQ IDNO :3/SEQ ID NO :4) et P388P/P388D (SEQ ID NO :9/SEQ ID NO :6) . La présente invention a également pour objet l'utilisation d'une molécule d'acide nucléique conforme à l'invention pour le dépistage d'E.coli pathogènes, et notamment pour le dépistage spécifique des souches d'E. coli de sérotype 0157 productrices de shiga-toxines. En particulier, la présente invention a pour objet un procédé de dépistage d'E.coli pathogènes, caractérisé en ce qu'il comprend la détection de la présence dans le génome des bactéries E. coli présentes dans l'échantillon à tester, d'un locus inséré à l'emplacement dudit génome correspondant à celui situé chez E.coli K12, entre les positions 93848 et 93849 de la séquence GenBank U82664. Selon un mode de mise en #uvre préféré du procédé de détection conforme à l'invention, il comprend au moins une étape d'amplification en chaîne par polymérase à l'aide d'un couple d'amorces comprenant une amorce s'hybridant avec la région du génome d'E.coli définie par la séquence de 2500 pb en amont de la position 93848 de la séquence GenBank U82664, et une amorce s'hybridant avec la région du génome d'E.coli définie par la séquence de 2500 pb en aval de la position 93849 de la séquence GenBank U82664. La détermination de la taille du produit d'amplification, et sa comparaison avec celui obtenu en utilisant le même couple d'amorces, à partir du génome d'une souche non-pathogène, par exemple la souche type E.coli K12 permet de détecter l'insertion d'un locus conforme à l'invention. En outre, la taille du produit d'amplification pour un même couple d'amorces peut également permettre de distinguer différents groupes d'E. coli pathogènes. Par exemple si l'on utilise le couple d'amorces P388L/P388P, on observe en présence d'E. coli pathogènes de sérotype 0157 productrices de shiga-toxines, un fragment d'amplification de 3316 pb spécifique de ces bactéries. Selon une variante, l'amplification est effectuée dans des conditions ne permettant pas d'amplifier des fragments de grande taille. L'absence de produit d'amplification permet, dans ce cas, de détecter l'insertion d'un locus conforme à l'invention. Ce mode de mise en #uvre ne permet toutefois pas de distinguer différents groupes d'E. coli pathogènes. Selon un mode de mise en #uvre du procédé de détection conforme à l'invention, il comprend au moins une étape d'amplification en chaîne par polymérase à l'aide d'un couple d'amorces s'hybridant avec des séquences internes d'une molécule a) telle que définie ci-dessus. Par exemple, pour la détection de STEC de sérotype 0157, l'utilisation des couples d'amorces suivants : P388C/P388D, P388F/P388D, P388F/P388G produit des fragments d'amplification de respectivement 300pb (SEQ ID NO : 12), 125pb (SEQ ID NO : 13) et 578pb (SEQ ID NO : 14) avec tous les STEC de sérotype 0157 alors qu'aucun produit d'amplification n'est observé avec la souche type d'E.coli K12 utilisée comme contrôle. Selon encore un autre un mode de mise en #uvre du procédé de détection conforme à l'invention, il comprend au moins une étape d'amplification en chaîne par polymérase à l'aide d'un couple d'amorces comprenant une amorce s'hybridant avec une séquence interne d'une molécule a) telle que définie ci-dessus, et une amorce s'hybridant avec la région du génome d'E.coli définie par la séquence de 2500 pb en amont de la position 93848 de la séquence GenBank U82664, ou une amorce s'hybridant avec la région du génome d' E. coli définie par la séquence de 2500 pb en aval de la position 93849 de la séquence GenBank U82664. Par exemple, pour la détection de STEC de sérotype 0157, l'utilisation des couples d'amorces suivants : P388P/P388D, P388L/P388M, produit des fragments de respectivement 1299pb (SEQ ID NO : 15) et 419pb (SEQ ID NO :16) avec tous les STEC de sérotype 0157 alors qu'aucun produit d'amplification n'est observé avec les souches d'E.coli non pathogènes. Les Inventeurs ont étudié la sensibilité et la spécificité des couples d'amorces P388C/P388D, P388F/P388D et P388F/P388G pour la détection des STEC-0157. Sur 211 souches bactériennes testées, les trois couples d'amorces ont une sensibilité équivalente et détectent les 55 STEC-0157 testés ainsi que les E.coli de sérotype 055, ce qui s'explique par l'origine clonale de ces deux sérotypes (FENG et al., 1998, J. Infect. Dis., 177 :1750-1753 ; WHITTAM et al., 1993, Infect. Immun., 61 : 1619-1629). En outre, avec les trois couples d'amorces, aucun signal n'est obtenu avec les bactéries Citrobacter et Hafnia alvei qui présentent des réactions immunologiques croisées avec l'antigène 0157. Pour la détection spécifique de tous les E. coli producteurs de shiga-toxines de sérotype 0157, on utilise de préférence le couple P388F/P388D. En effet ce couple d'amorces présente une spécificité particulièrement élevée et ne donne aucune réaction positive avec les STEC d'autres sérotypes (30 sérotypes testés) ainsi qu'avec les E.coli non-STEC de sérotype 0157 ou d'autres sérotypes (55 testés) et les bactéries d'autres espèces. Les oligonucléotides conformes à l'invention peuvent également être utilisés comme amorces dans une technique de type PCR-ELISA. Dans ce cas, on peut, par exemple, utiliser l'oligonucléotide P388D préalablement immobilisé sur un support solide, en tant que sonde de capture pour fixer le produit d'amplification de 578 pb obtenu avec les amorces P388G et P388F ; ce produit d'amplification peut alors être révélé soit directement (par exemple s'il a été marqué de façon appropriée par incorporation de nucléotides marqués au cours de la réaction d'amplification) soit par l'intermédiaire d'une sonde de détection marquée.' Différentes méthodes pour fixer des acides nucléiques sur un support solide, ainsi que celles pour les marquer à l'aide de marqueurs froids ou radioactifs sont bien connues de l'homme du métier à titre d'exemple on citera celles décrites dans Current Protocols in Molecular Biology (Frederick M. AUSUBEL,2000, Wiley and son Inc, Library of Congress, USA). La présente invention a également pour objet une molécule d'acide nucléique obtenue par amplification en chaîne par polymérase d'un E. coli non pathogène à l'aide du couple d'amorces P388P/P388L. Cette molécule est utilisable à titre de témoin, dans le cadre d'un procédé de détection conforme à l'invention. Avantageusement, ladite molécule est obtenue à partir d'E.coli K12 et est constituée par un fragment de 682 pb (SEQ ID NO :10). La présente invention a également pour objet toute protéine codée par un cadre ouvert de lecture présent sur une molécule d'acide nucléique conforme à l'invention, et notamment sur une molécule issue d'une souche d'E.coli de sérotype 0157 productrice de shiga-toxines. En effet, à partir d'une banque génomique d'E.coli 0157:H7, les Inventeurs ont isolé une séquence de 5478 pb (SEQ ID NO : 1) contenant un locus conforme à l'invention dénommé SILO,57, défini par la séquence présentée dans la liste de séquences en annexe sous le numéro SEQ ID NO : 2. La figure 1 illustre l'organisation génétique du locus d' E. coli 0157 : H7, dénommé SIL0157, inséré dans le génome d'E.coli entre les positions 93849 et 93848, (en référence au génome type d'E. coli non-pathogène K12, Genbank U82664). Les régions indiquées en blanc représentent les régions homologues entre la séquence d'E.coli non pathogène K12 (Genbank U82664) et la séquence de STEC 0157:H7. Les régions indiqués en noir représentent le locus SILO,57. Les grandes flèches noires comprenant des numéros d'accession représentent les phases ouvertes de lecture décrites dans E. coli non pathogène. Les grandes flèches blanches représentent les phases ouvertes de lecture potentielles comprises dans le locus SILO,57. Les petites flèches indiquent les positions des différentes amorces utilisées pour les amplifications PCR. Les Inventeurs ont analysé ce locus SILO157, et ont ainsi mis en évidence mis en évidence des cadres ouverts de lecture et, notamment 4 cadres ouverts de lecture codant des protéines dénommées ci-après IHP1, IHP2, IHP3 et IHP4, de respectivement 338,140, 120 et 159 acides aminés. Les séquences en acides aminés des protéines IHP1, IHP2, IHP3 et IHP4 sont présentées dans la liste en annexe, respectivement sous les numéros SEQ ID NO : 18, 20,22 et 24, les séquences nucléotidiques correspondantes sont présentées dans la liste en annexe, respectivement sous les numéros SEQ ID NO : 17, 19,21 et 23. Les protéines conformes à l'invention représentent de nouveaux antigènes potentiellement utilisables pour la détection des E. coli pathogènes. Notamment, dans le cas des protéines dont les gènes sont portés par le locus SILO157, mentionné ci-dessus, la protéine IHP1, qui présente des homologies avec des protéines de la membrane externe et des adhésines d'autres bactéries (flagelline de Salmonella et adhésine de Neisseria, Yersinia, Haemophilus et Staphylococcus) constitue probablement un antigène de surface potentiellement utilisable pour la détection des E.coli producteurs de shigatoxines de sérotype 0157. La présente invention a également pour objet tout peptide représentant un fragment d'au moins 5 acides aminés, et de préférence d'au moins 7 à 15 acides aminés d'une protéine conforme à l'invention. La présente invention a en outre pour objet : - des cassettes d'expression comprenant les séquences nucléotidiques codant les protéines ou les peptides conformes à l'invention, placées sous le contrôle transcriptionnel d'un promoteur approprié, notamment un promoteur permettant l'expression desdites protéines ou desdits peptides dans des cellules hôtes transformées. Avantageusement, les cassettes d'expression contiennent les séquences codant l'une des protéines IHP1 à IHP4, telles que définies ci-dessus (SEQ ID NO :17, 19,21 et 23). - des vecteurs recombinants, comprenant un insert constitué par les séquences nucléotidiques codant les protéines ou les peptides conformes à l'invention. Avantageusement, ces vecteurs sont des vecteurs d'expression comprenant au moins une cassette d'expression telle que définie ci-dessus. De nombreux vecteurs où l'on peut insérer une molécule d'acide nucléique d'intérêt afin de l'introduire et de la maintenir dans une cellule hôte eucaryote ou procaryote, sont connus en eux-mêmes ; le choix d'un vecteur approprié dépend de l'utilisation envisagée pour ce vecteur (par exemple réplication de la séquence d'intérêt, expression de cette séquence, maintien de la séquence sous forme extrachromosomique ou bien intégration dans le matériel chromosomique de l'hôte), ainsi que de la nature de la cellule hôte. L'invention a en outre pour objet des cellules procaryotes ou eucaryotes transformées par un plasmide ou un vecteur recombinant conforme à l'invention. Les vecteurs recombinants et les cellules transformées conformes à l'invention sont utiles notamment pour la production des protéines et des peptides conformes à l'invention. La présente invention a également pour objet des anticorps, polyclonaux ou monoclonaux, dirigés contre une protéine ou un peptide conforme à l'invention. Ces anticorps peuvent être obtenus par les méthodes classiques, connues en elles-mêmes, comprenant notamment l'immunisation d'un animal avec une protéine ou un peptide conforme à l'invention, afin de lui faire produire des anticorps dirigés contre ladite protéine ou ledit peptide. Les techniques de production et de purification de protéines recombinantes, les méthodes d'immunisation et de production d'anticorps et les techniques immunologiques reposant sur la 'détection de complexes antigène-anticorps (ELISA, RIA, Western-Blot) sont connues en elles-mêmes ; à titre d'exemple on peut citer celles décrites dans Current Protocols in Molecular Biology (Frederick M. A USUBEL, 2000, Wiley and son Inc, Library of Congress, USA) et dans Current protocols in Immunology (John E. Coligan, 2000, Wiley and son Inc, Library of Congress, USA). La présente invention a aussi pour objet l'utilisation d'au moins une protéine, un peptide, ou un anticorps conforme à l'invention pour l'obtention d'un médicament, destiné à la prévention ou au traitement d'une infection induite par une bactérie E.coli pathogène, notamment une bactérie E. coli de sérotype 0157 productrice de shiga-toxines. La présente invention a également pour objet l'utilisation d'au moins une protéine, un peptide, ou un anticorps conforme à l'invention pour la détection immunologique des E. coli pathogènes, notamment pour le dépistage des E. coli de sérotype 0157 productrices de shigatoxines. Les molécules d'acide nucléique, les protéines et les peptides, ainsi que les anticorps conformes à l'invention peuvent également constituer des réactifs utilisables pour la détection de souches d'E.coli pathogènes, notamment de toutes les souches d'E.coli productrices de shiga-toxines de sérotype 0157. Les réactifs conformes à l'invention sont utilisables pour la recherche de souches d'E.coli pathogènes, notamment de toutes les souches d'E.coli de sérotype 0157 produisant de shiga-toxines dans les produits alimentaires, en particulier l'eau, les produits alimentaires frais tels que les viandes, le lait cru et les produits dérivés (fromages, produits laitiers). Ces réactifs peuvent également être utilisés pour le diagnostic des infections à E.coli pathogènes, notamment les infections à E. coli producteurs de shiga-toxines de sérotype 0157 des humains et des animaux, à partir d'un échantillon biologique, par exemple dans les féces. L'invention a en outre pour objet une trousse de détection d'E.coli pathogènes, notamment de toutes les souches d'E.coli producteurs de shiga-toxines de sérotype 0157, caractérisée en ce qu'elle inclut au moins un réactif selon l'invention. La présente invention sera mieux comprise à l'aide du complément de description qui va suivre, qui se réfère à des exemples non-limitatifs illustrant l'isolement et la caractérisation d'une molécule d'acide nucléique conforme à l'invention, et son utilisation pour l'identification d'Escherichia coli pathogènes, et en particulier des Escherichia coli de sérotype 0157 productrices de shiga-toxines. EXEMPLE 1 : IDENTIFICATION ET CARACTERISATION D'UN LOCUS INSERE DANS LE CHROMOSOME D'E. COLI 0157:H7 PAR ANALYSE DU POLYMORPHISME DE L'ADN PAR RAPD (RANDOMLY AMPLIFIED POLYMORPHIC DNA). 1 . Identification d'un fragment d' ADN spécifique d' E. coli 0157:H7 par RAPD 1. 1. Extraction de l'ADN bactérien et amplification PCR 12 souches d'E. coli : 10 souches de STEC [3 souches 0157:H7 et 1 souche (0157: H-, 026:H11, 091 : H21, 0103:H2, 0111:H+, 0113:H4 et 0128:H2)] et 2 souches d'E. coli de sérotype 0157, non productrices de shiga-toxines (0157-non STEC) sont cultivées dans du milieu TSB (Tryptone Soy Broth), à 37 C, pendant une nuit et l'ADN bactérien total est extrait à l'aide de la matrice INSTAGENE (BIO-RAD), en suivant les instructions du fabricant. Les souches d'E. coli sont analysées par RAPD, en utilisant le kit READY TO GO (PHARMACIA BIOTECH) . La réaction de PCR est réalisée dans un volume final de 25 l, en présence de 10 ng d'ADN bactérien total purifié et de 25 pmoles de l'amorce oligonucléotidique P1 (PHARMACIA-BIOTECH). L'amplification PCR (GENE-AMP PCR SYSTEM 9600, PERKIN ELMER) est réalisée dans les conditions suivantes : une étape initiale de dénaturation à 95 C pendant 5 min est suivie de 45 cycles alternant une étape de dénaturation à 95 C pendant 1 min, une étape d'hybridation des amorces à 36 C, pendant 1 min et une étape d'extension à 72 C, pendant 2 min. Le produit d'amplification est séparé par électrophorèse en gel d'agarose à 2 % contenant du bromure d'éthidium, dans du tampon TBE (Tris-Borate-EDTA). Les fragments d'ADN amplifiés sont visualisés sous une lampe à ultraviolet. Le profil de l'analyse RAPD montre qu'un fragment de 387 pb est amplifié de façon aléatoire, uniquement dans les colibacilles producteurs de shiga-toxines de sérotype 0157 (3 souches de sérotype 0157:H7 et 1 souche de sérotype O157 :H-). 1. 2. Hybridation du fragment obtenu par RAPD Le fragment de 387 pb est isolé à partir du gel d'agarose, purifié à l'aide du kit d'extraction QIAEX II (QIAGEN) et cloné dans' le vecteur pMOS Blue (AMERSHAM PHARMACIA BIOTECH), à l'aide du kit de clonage d'extrémités franches d'AMERSHAM LIFE SCIENCE, pour donner le plasmide pSP7. Une sonde correspondant à l'insert de 387 pb (sonde P7) est synthétisée par PCR et marquée à la digoxigénine à l'aide du réactif PCR DIGOXIGENIN LABELING MIX (ROCHE MOLECULAR). Cette sonde est hybridée, par Dot-blot, avec l'ADN des 12 souches d'E. coli analysées par RAPD. L'hybridation est réalisée sur des membranes de nylon (ROCHE MOLECULAR), pendant une nuit à 65 C, dans un tampon d'hybridation classique (ROCHE MOLECULAR) contenant 20 ng/ml de sonde dénaturée marquée à la digoxigénine, en suivant les protocoles classiques décrits dans MANIATIS et al. (Molecular Cloning : a laboratory manual, 1982, Cold Spring Harbor Laboartory, Cold Spring Harbor, New York) . Puis, l'hybridation de la sonde marquée à la digoxigénine est détectée par luminescence (DIG LUMINESCENT DETECTION KIT, ROCHE MOLECULAR) sur des films BIOMAX (KODAK). Les résultats de l'hybridation montrent que la sonde P7 marquée ne reconnaît que les STEC de sérotype 0157. Ce résultat suggère que le fragment de 387 pb obtenu par RAPD pourrait provenir d'un locus spécifique des souches de colibacilles productrices de shiga-toxines de sérotype 0157. 2 . Identification et localisation d'un locus inséré dans le chromosome d'E. coli 0157:H7. 2. 1 Construction d'une banque d'ADN d'E. coli 0157:H7 L'ADN chromosomique de la souche EDL 933 (ATCC 43895) d'E. coli 0157:H7, purifié à l'aide du kit QIAGEN GENOMIC TIP SYSTEM (QIAGEN) est digéré, dans sa totalité, par Hind III (ROCHE MOLECULAR), en suivant les instructions du fabricant. Puis 300 ng de cet l'ADN digéré est ligué avec 10 ng du plasmide pUC 18, digéré par Hind III et déphosphorylé (PHARMACIA-BIOTECH), en présence de 5UI de la ligase à ADN de T4 (ROCHE MOLECULAR), dans un volume réactionnel de 20 \il, à 16 C, pendant une nuit. Des bactéries E. coli MOS Blue compétentes sont transformées par le produit de ligation et étalées sur des boîtes de LB-agar contenant 100 g/ml d'ampicilline, 25 g/ml d'IPTG isopropyl P-D-thiogalacto- pyranoside et 25 g/ml de X-gal (5-bromo-4-chloro-3-indolylD-galactoside) et incubées une nuit à 37 C, selon les protocoles classiques décrits dans MANIATIS et al., précité. La présence du fragment isolé par RAPD dans l'ADN plasmidique des colonies résistantes à l'ampicilline est analysée par hybridation homologue à l'aide de la sonde P7. L'analyse de 1000 colonies de bactéries transformées a permis d'isoler le plasmide pSP26 contenant un fragment de 4,4kb du génome d'E. coli 0157:H7. 2. 2. Localisation du locus inséré dans le chromosome d'E. coli 0157:H7 Les plasmides pSP7 et pSP26 ont été séquences par les techniques classiques et la séquence obtenue a été comparée avec les séquences disponibles dans les banques de données à l'aide du programme BLAST. L'alignement des séquences des plasmides pSP7 et pSP26 montre que la séquence de l'insert de 387 pb du plasmide pSP7 comprend l'extrémité 3' de la séquence de l'insert de 4,4 kb du plasmide pSP26, additionnée de 127 nucléotides supplémentaires, situés à son extrémité 3' (Figure 1). L'analyse de la séquence du fragment de 4,4 kb de pSP26 montre que son extrémité 5' présente 98% d'identité avec la séquence génomique des minutes 9 à 11 (positions 96304-93849, en référence à la séquence génomique d'E. coli non pathogène de type K12, Genbank U82664). En revanche, l'extrémité 3' de ce fragment (nucléotides 2457 à 4418) et la totalité de la séquence de 387 pb du plasmide pSP7 ne présentent aucune homologie avec la séquence de souches non pathogènes d'E. coli (Figure 1). Ces résultats démontrent que le génome d'E.coli 0157:H7 contient un locus inséré entre les positions 93848 et 93849, en référence à la séquence génomique d'E. coli non pathogène de type K12 (Genbank U82664). Les résultats obtenus à l'exemple 1 indiquent également que ce locus est également présent dans d'autres STEC de sérotype 0157 mais qu'il est absent de souches de colibacilles productrices de shigatoxines d'autres sérotypes ainsi que des souches d'E.coli de sérotype 0157 non productrices de shiga-toxines. 2. 3. Séquençage complet du locus inséré dans le chromosome d'E. coli 0157:H7 La séquence du locus inséré dans le chromosome d'E. coli 0157:H7 a été complétée à partir du produit d'amplification obtenu avec les amorces sens P388D (position 4205 à 4230 du fragment de 4,4kb de pSP26, tableau I) et antisens P388P (positions 93436 à 93460 d'E. coli nonpathogène de type K12, tableau I). La réaction de PCR est réalisée dans un volume final de 100 l contenant, 3 fil d'ADN total purifié comme décrit à l'exemple 1, 10 l de tampon PCR 10 fois concentré (100 mM Tris HC1 pH 8,5, 250 mM KC1, 50 mM (NH4)2 SO4, 20 mM MgSO4), 200 M de chaque désoxynucléotide, 600 nM de chaque amorce et 2, 5 UI de polymérase à ADN PWO (ROCHE MOLECULAR) . L'amplification PCR est réalisée dans les conditions suivantes : une étape initiale de dénaturation à 94 C pendant 2 min est suivie de 30 cycles alternant une étape de dénaturation à 94 C pendant 40 s, une étape d'hybridation des amorces à 69 C, pendant 40 s et une étape d'extension à 72 C, pendant 50 s et une étape finale d'élongation est effectuée à 72 C pendant 10 min. Ces amorces n'amplifient aucune séquence d'E. coli non-pathogène de type K12, en revanche un produit d'amplification de 1299 pb dénommé Amp 388P/388D, (figure 1) est amplifié à partir de l'ADN d'E. coli 0157:H7 (souche EDL 933) . La disposition relative des différents fragments séquences est illustrée à la figure 1. La séquence du produit d'amplification de 1299 pb montre que les 413 pb de son extrémité 3' présentent 92% d'identité avec la séquence d'E. coli non-pathogène (positions 93848 à 93436, en référence à la séquence du génome d'E.coli non pathogène de type K12, Genbank U82664). Les séquences du produit d'amplification de 1299 pb et du fragment de 4,4 kb de pSP26 ont permis d'identifier une nouvelle séquence de 5478 pb (SEQ ID NO : 1), dans E. coli 0157:H7. Cette séquence contient un petit locus de 2634 pb (positions 2457 à 5090 de la séquence de 5478 pb) inséré dans le chromosome d' E. coli 0157:H7, flanqué de part et d'autre part des séquences conservées d'E. coli non pathogènes. Ce locus dénommé SILO,57 (Small Inserted Locus in STEC 0157) est présenté dans la liste en annexe sous le numéro SEQ ID NO : 2. La séquence de SILO157 ne présente aucune homologie avec une séquence connue et possède un contenu en G+C de 44, 4%, qui est nettement plus faible que celui de l'ensemble du génome d'E. coli (50,8%, BLATTNER et al., 1997, Science, 277 : 1453-1474). Ce locus est inséré entre les positions 93848 et 93849, en référence à la séquence du génome d'E.coli non pathogène de type K12, Genbank U82664). De façon remarquable, dans les colibacilles entérohémorragiques de sérotype 0157:H7, ce locus est précisément inséré entre les codons stop de 2 phases ouvertes de lecture (Genbank AAB40241, homologue à la phase ouverte de lecture HI0293 d'Haemophilus influenzae et Genbank AAB40242) qui sont en orientation opposée. En revanche, dans la séquence d'E. coli non-pathogène de type K12, les codons stop de ces 2 phases ouvertes de lecture sont directement joints. 3. Analyse des phases ouvertes de lecture potentielles du locus SILO157 Le locus SILO,.57 comprend 4 phases ouvertes de lecture potentielles de plus de 100 acides aminés, dénommées respectivement IHP1 (Inserted Hypothetical Protein 1), IHP2 (Inserted Hypothetical Protein 2), IHP3 (Inserted Hypothetical Protein 3) et IHP4 (Inserted Hypothetical Protein 4), correspondant respectivement à des protéines de 338 (SEQ ID NO : 18), 140 (SEQ ID NO : 20), 120 (SEQ ID NO : 22) et 159 (SEQ ID NO : 24) acides aminés. Le brin positif code IHP1 (nucléotides des positions 3364 à 4380 de la séquence de 5478 pb, SEQ ID NO :17) et IHP2 (nucléotides des positions 4465 à 4887 de la séquence de 5478 pb SEQ ID NO : 19), dans la même phase, et le brin négatif code IHP3 (nucléotides des positions 2997 à 2635 de la séquence de 5478 pb SEQ ID NO : 21) et IHP4 (nucléotides des positions 4002 à 3523 de la séquence de 5478 pb SEQ ID NO : 23), dans la même phase. L'analyse de la protéine IHP1, à l'aide des programmes PSORT et BLAST indique respectivement la présence d'une séquence N-terminale clivable de 23 acides aminés, et des homologies avec des protéines de membrane et des adhésines bactériennes. En particulier, on peut noter des homologies avec les protéines suivantes ; une adhésine/invasive potentielle de Neisseria meningitidis (Genbank AAF 42321 et Genbank AAF41395), l'invasine Yopl de Yersinia pseudotuberculosis (Genbank CAA32088), l'adhésine YadA de Yersinia enterocolitica (Genbank CAA32086), l'adhésine HIA (Genbank AAC43721) et la protéine HSF (produit du locus de fibrille, dénommé locus hsf, numéro d'accession Genbank AAC44560) d'Haemophilus influenzae, la flagelline E-1 de Salmonelle rubislaw (Genbank CAA28190) et l'autolysine/adhésine de la protéine de surface Aas de Staphylococcus saprophyticus (Genbank CAA03852). L'analyse de la protéine IHP2 indique la présence d'une séquence N-terminale clivable de 27 acides aminés et peu d'homologie avec des protéines connues, mis à part avec la protéine YCCF de Bacillus subtilis (Genbank CAB12066). IHP3 présente des homologies avec un transporteur rénal humain du sodium, dépendant du phosphate (Genbank AAA36354), ainsi qu'avec la transposase de Bacillus thuringiensis (Genbank Q99335). IHP4 ne présente pas d'homologie avec des protéines connues. L'ensemble de ces résultats montre que la souche d'E.coli entérohémorragique 0157:H7 contient un petit locus (SILO,57) inséré dans son chromosome. L'insertion de ce locus est spécifique des souches d'E. coli productrices de shigatoxines de sérotype 0157 (STEC-0157) et comprend 4 phases ouvertes de lecture potentielles dont une (IHP1) code vraisemblablement pour une protéine membranaire de surface de type adhésine qui pourrait jouer un rôle dans la pathogénicité des STEC de sérotype 0157. EXEMPLE 2 : DETECTION DES STEC-0157 PAR PCR 1. Extraction d'ADN et réaction PCR 211 souches d'E. coli . 56 souches de STEC de sérotype 0157,93 souches de STEC d'autres sérotypes, 55 souches d'E. coli non productrices de shiga-toxines et 7 souches de bactéries d'autres espèces, provenant de laboratoires de référence ou bien isolées à partir d'aliments ou d'échantillons biologiques, sont cultivées dans du milieu TSB (Tryptone Soy Broth), à 37 C, pendant une nuit. L'ADN bactérien total est extrait à l'aide de la matrice INSTAGENE (BIO-RAD), en suivant les instructions du fabricant. La PCR est réalisée à l'aide du GENEAMP PCR SYSTEM 9600 (PERKIN ELMER) et d'amorces obtenues par les techniques classiques de synthèse oligonucléotidique. La séquence des différentes amorces utilisées est présentée dans le tableau I ci-dessous, dans lequel les positions dans SILO,57 sont relatives à la séquence du fragment de 5478 pb (SEQ ID NO :1). TABLEAU 1 Position Amorce Position dans dans E. coli séquence numéro SILO157 K12 P388C 4504-4479 absente 5'-CCGCCAGCAGGGAAAACGATTTAATG-3' ' SEQ ID NO 8 P388D 4205-4230 1 absente 5'-TTAAAACCGGTGACGTGATGATGGTG-3' SEQ ID NO.6 P388F 4329-4305 absente 5'-CGCAGAAATACCGGCTTTAAGTACC-3' SEQ ID NO 7 P388G 3752-3776 absente 5'-AGCAACAGGCGCAGATCGTAGCCAC-3' SEQ ID NO : 5 Les couples d'amorces suivants : P388C/P388D, P 388F/P388D et P388F/P388G sont utilisés dans un volume réactionnel de 50 l contenant 200 M de chacun des désoxynucléotides (dNTP), 600 nM de chacune des amorces, 5 l de tampon 10X GENE AMP (PERKIN ELMER), 2,5 UI d'AMPLI TAQ GOLD (PERKIN ELMER) et 3 l (environ 10 ng) d'ADN bactérien purifié. L'amplification PCR est réalisée dans les conditions suivantes : une étape initiale de dénaturation à 94 C pendant 10 min est suivie de 35 cycles alternant une étape de dénaturation à 94 C pendant 25 s, une étape d'hybridation des amorces à 71 C, pendant 30 s et une étape d'extension à 72 C, pendant 30 s et une étape finale d'élongation est effectuée à 72 C pendant 10 min. Les produits d'amplification sont séparés par électrophorèse en gel d'agarose à 2 % contenant du bromure d'éthidium, dans du tampon TBE (Tris-Borate-EDTA) et visualisés sous une lampe à ultraviolet. L'échelle de 1 kb (BIOLABS NEW ENGLAND) ou le marqueur de poids moléculaire VI (ROCHE MOLECULAR) sont utilisés comme marqueur de taille. La taille des fragments attendus par amplification d'un STEC de sérotype 0157:H7 (figure 1) ou bien d'une souche d'E. coli non pathogène de type K12, avec les différents couples d'amorces, est présentée dans le tableau II ci-dessous. TABLEAU Il Taille du produit d'amplification (pb) Couple d'amorces STEC O157 :H7 E. coli K12 P388C/P388D 300 (SEQ ID NO 12) aucun P388F/P388D 125 (SEQ ID NO 13) aucun P388F/P388G 578 (SEQ ID NO 14) aucun 2. Etude de la spécificité des couples d'amorces P388C/P388D, P388F/P388D et P388F/P388G a) couple d'amorces P388C/P388D Dans une première série d'expériences, le couple P388C/P388D a été utilisé dans les conditions d'amplification décrites ci-dessus. Les résultats obtenus avec les 211 souches testées sont les suivants : - un produit de 300 pb est amplifié dans toutes les souches de STEC de sérotype 0157, aucun produit n'est amplifié dans la majorité des souches de colibacilles productrices de shiga-toxines d'autres sérotypes (STEC-non 0157) - aucun produit n'est amplifié dans les souches d'E. coli de sérotype 0157 non productrices de shiga-toxines (0157-non STEC) , - aucun produit n'est amplifié dans les bactéries d'autres espèces, en particulier Hafnia alvei et Citrobacter. Les résultats obtenus montrent que le couple d'amorces utilisé permet de détecter spécifiquement les STEC de sérotype 0157. En outre, l'utilisation de cette méthode de détection évite les problèmes de réactions croisées des sérums anti-0157 avec les antigènes d' Hafnia alvei ou de Citrobacter, observées avec les méthodes immunologiques (ELISA). Il a également été observé que lorsque la température d'hybridation du couple d'amorce P388C/P388D était abaissée jusqu'à 60 C, un produit d'amplification était observé dans les souches d'E. coli de sérotype suivant (055, 077,079, 145 et 0127:H6). b) couples d'amorces P388F/P388D et P388F/P388G Pour augmenter la spécificité de la détection des STEC de sérotype 0157, deux autres amorces ont été testées : l'amorce P388F dont la position est interne au fragment de 300 pb amplifié à l'aide des amorces P388C/P388D, et l'amorce P388G, située en 5' de cette séquence (Tableau I et figure 1 ) . Ces amorces ont été sélectionnées de façon à ce que les amorces P388F, P388G et P388D qui sont utilisées en couple (P388F/P388D et P388F/P388G) aient des températures de fusion proches. Les mêmes 211 souches de bactéries ont été testées avec les 2 couples d'amorces P388F/P388D et P388F/P388G et les résultats obtenus avec ces souches sont illustrés dans les 2 premières colonnes des Tableaux III, IV et V ci-dessous. TABLEAU III Souches Nombre d'E. coli de Nombre de souches positives en PCR/nombre de souches testées souches STEC Total:149 P388F/P388G P388F/P388D P388P/P388L P388UP388M P388P/P388 (élongation 40s) 0157.H7 34 34/34 34/34 0/34 34/34 34/34 0157/H7(P)a 4 4/4 4/4 0/4 4/4 4/4 0157. NM 5 5/5 5/5 0/5 5/5 5/5 0157.H- 1 ! 1/1 1/1 0/1 1/1 1/1 0157.ND 12 12/12 12/12 0/12 12/12 12/12 03 2 0/2 0/2 2/2 0/2 0/2 04-NM 1 0/1 0/1 1/1 0/1 0/1 05 2 0/2 0/2 2/2 0/2 0/2 06 9 0/9 0/9 9/9 0/9 0/9 08:H19 , 1 0/1 0/1 1/1 0/1 0/1 022 1 0/1 0/1 1/1 0/1 0/1 026 14 1 0/14 0/14 14/14 0/14 0/14 045:H2 1 0/1 0/1 1/1 0/1 0/1 053 2 0/2 0/2 2/2 0/2 0/2 055:H7 1 1/1 1/1 0/1 1/1 1/1 076 1 0/1 0/1 1/1 0/1 0/1 077 3 0/3 0/3 0/3 1/3 1/3 079 1 0/1 0/1 0/1 1/1 1/1 088:ND 1 0/1 0/1 1/1 0/1 0/1 091 5 5 0/5 0/5 5/5 0/5 0/5 0103:H2 7 0/7 0/7 7/7 0/7 0/7 0110 2 0/2 0/2 2/2 0/2 0/2 0111 , 13 0/13 0/13 13/13 0/13 0/13 0113 3 0/3 0/3 3/3 0/3 0/3 0117 2 0/2 0/2 2/2 0/2 0/2 0118:H 1 0/1 0/1 1/1 0/1 0/1 0125 1 0/1 0/1 1/1 0/1 0/1 0126:H8 1 0/1 0/1 1/1 0/1 0/1 0128:H2 1 0/1 0/1 1/1 0/1 0/1 0136 2 0/2 0/2 2/2 0/2 0/2 0139-ND 1 0/1 0/1 1/1 0/1 0/1 0141ac 1 0/1 0/1 1/1 0/1 0/1 0145 3 0/3 0/3 0/3 0/3 0/3 0147 1 0/1 0/1 1/1 0/1 0/1 NT , 9 0/9 0/9 9/9 0/9 0/9 souches guéries du plasmide de OU MUa TABLEAU IV : Souches Nombre Nombre de souches positives en PCR/nombre de souches testees d'E. coli de souches non-STEC Total :55 P388F/P388G P388F/P388D P388P/P388L P388UP388M P388P/P388D (élongation 40s) 0157-H- 2 1 0/2 0/2 2/2 0/2 0/2 0157:ND 40 0/40 0/40 40/40 0/40 0/40 0157:H19 2 0/2 0/2 2/2 0/2 0/2 026 3a 0/3 0/3 3/3 0/3 0/3 055 3b 3/3 3/3 0/3 3/3 3/3 0103 1 0/1 0/1 1/1 0/1 0/1 0111 2c 0/2 0/2 2/2 0/2 0/2 0127:H6 1d 1/1 0/1 0/1 0/1 0/1 (E2348/69)~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~ 0128:H2 1e 0/1 0/1 1/1 0/1 0/1 a : 2 souches sur 3 sont des EPEC b : les 3 souches sont des EPEC c:1 souche sur 2 est une souche d'E. colientéroaggrégative d : Cette souche est la souche de référence des EPEC e : cette souche est un EPEC TABLEAU V : Autres Nombre Nombre de souches positives en PCR/nombre de souches testées bactéries de souches , 1 Total:7 P388F/P388G P388F/P388D P388P/P388L P388L/P388M P388P/P388D (élongation 40s) Enterobacter 1 0/1 0/1 0/1 0/1 0/1 Citrobacter 1 0/1 0/1 0/1 0/1 0/1 Hafnia alvei , 5 0/5 0/5 0/5 0/5 0/5 Ces résultats montrent que : - toutes les souches de colibacilles productrices de shiga-toxines de sérotype 0157 (56 souches de STEC de sérotype 0157 testées dont 38 souches de sérotype 0157:H7 incluant 4 souches guéries du plasmide de 60 Mda, 1 souche de sérotype 0157:H- et 17 autres souches de STEC de sérotype 0157 (5 0157:NM (Non Mobile) et 12 0157 : ND (Non Déterminé)] sont amplifiés par les couples d'amorces P388F/P388D et P388F/P388G. En outre, l'observation d'un produit d'amplification dans les souches d'E. coli 0157:H7 guéries du plasmide de 60 MDa confirme également la localisation chromosomique du locus SIL0157. - les souches de colibacilles productrices de shiga-toxines d'autres sérotypes (30 sérotypes différents testés sur un total de 93 souches) ne sont pas amplifiés avec les couples d'amorces P388F/P388D et P388F/P388G. En particulier les sérotypes 0145,077 et 079 qui sont amplifiés avec les amorces P388C/P388D ne sont pas amplifiés avec ces deux couples d'amorces. - aucune des souches de sérotype 0157 non productrices de shiga-toxines (44 souches testées) n'est amplifiée avec les couples d'amorces P388F/P388D et P388F/P388G, 7 souches de 3 autres genres bactériens dont celles qui donnent des réactions croisées avec 0157 par les techniques immunologiques (Citrobacter et Hafnia alvei) ne sont pas amplifiées avec les couples d'amorces P388F/P388D et P388F/P388G, les souches d'E. coli de sérotype 055 (STEC et non-STEC) sont également amplifiées avec les couples d'amorces P388F/P388D et P388F/P388G, ce qui s'explique par l'origine clonale des sérotypes 055 et 0157 qui a été clairement démontrée (FENG et al., 1998, J. Infect. Dis., 177 :1750-1753 ; WHITTAM et al., 1993, Infect. Immun., 61 : 1619-1629). les souches d'E. coli non productrices de shiga-toxines d'autres sérotypes (non-STEC et non-0157 ; sérotypes testés sur un total de 8 souches) ne sont pas amplifiés par les couples d'amorces P388F/P388D et P388F/P388G, à l'exception d'0127:H6 qui est amplifié avec le couple P388F/P388G mais pas avec le couple P388F/P388D. L'ensemble des résultats démontre que les deux couples d'amorces P388F/P388G et P388F/P388D permettent de détecter l'ensemble des souches de colibacilles productrices de shiga-toxines de sérotype 0157. Le couple P388F/P388D présente cependant une spécificité plus élevée que le couple P388F/P388G. EXEMPLE 3 : ANALYSE DE LA CONSERVATION DU SITE D'INSERTION DU LOCUS SILO,57 DANS E. COLI ET MISE EN EVIDENCE D'UN LOCUS HOMOLOGUE DANS LE GROUPE DES COLIBACILLES ENTEROPATHOGENES (EPEC) 1. Analyse de la conservation du site d'insertion du locus SILO,57 dans E. coli La conservation du site d'insertion du locus SILO,57 a été étudiée par PCR dans les 211 souches de bactéries analysées à l'exemple 2, à l'aide des 3 couples d'amorces suivants : les couples P388L/P388M et P388P/P388D qui amplifient respectivement les jonctions gauches et droites du locus SILO157 et le couple P388P/P388L qui amplifie un produit de 682 pb dans toutes les souches d'E. coli non pathogènes comme la souche K12 (Figure 1). Les réactions sont préparées selon le protocole décrit à l'exemple 1 et l'amplification PCR est réalisée dans les conditions suivantes : une étape initiale de dénaturation à 94 C pendant 10 min est suivie de 35 cycles alternant une étape de dénaturation à 94 C pendant 40 s, une étape d'hybridation des amorces à 65 C, pendant 40 s et une étape d'extension à 72 C, pendant 50 s et une étape finale d'élongation est effectuée à 72 C pendant 10 min. Les séquences des amorces utilisées et la taille des fragments attendus avec les STEC-0157 ou avec la souche E. coli K12 sont présentées respectivement dans les tableaux VI et VII ci-dessous. Dans le tableau VI les positions dans SILO,57 sont relatives au fragment de de 5478 pb (SEQ ID NO : 1) et les positions dans E.coli K12 sont relatives à la séquence Genbank U82664. TABLEAU VI :: ~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~ Amorce Position Position numéro dans dans E. séquence SILO157 coli K12 P388M 2606-2581 absente 5'-GGCGGAGGCGGCCTACGGTTTTGGCG-3' SEQ ID NO 4 P388P 5503-5479 93436-93460 5'-GAACGATGAACATCAGCGATGTAGC-3' SEQ ID NO.9 P388L 2188-2213 94117-94092 5'-CGCTGCTCGCCGCCTGGCTGTGGTGG-3' 1 SEQ ID NO:3 TABLEAU VII Taille du produit d'amplification (pb) Couple d'amorces STEC 0157: H7 E. coli K12 P388P/P388D 1299 (SEQ ID NO :15) aucun P388P/P388L 3316 (SEQ ID NO :11) 682 (SEQ ID NO :10) P388L/P388M 419 (SEQ ID NO :16) aucun Les résultats sont illustrés dans les 3 dernières colonnes des tableaux III, IV et V. Les résultats obtenus montrent qu'en utilisant des durées d'élongation courtes (40s) pour le couple P388P/P388L, aucun produit d'amplification n'est observé dans toutes les souches de colibacilles producteurs de shigatoxines de sérotype 0157, et que la majorité des autres souches sont identiques à la souche d'E. coli K12 dans la région des minutes 9 à 11 et ne contiennent pas le locus SILO,57- Cependant, quelques souches testées ont un profil d'amplification particulier : 1) Les souches de sérotype 055 (STEC et nonSTEC), la souche de sérotype 079 (STEC) et une souche de sérotype 077 (STEC) ont un profil analogue à celui des STEC de sérotype 0157 ce qui suggère la présence, dans ces souches d'un locus homologue au SILO,57, inséré entre les positions 93849 et 93848 du génome d'E. coli., en référence au génome d'E.coli non-pathogène de type K12 (Genbank U82664) Néanmoins, à l'exception des souches de colibacilles de sérotype 055, qui du fait de leur parenté avec le sérotype 0157 sont amplifiées par les amorces P388F/P388D et P388F/P388G, le locus homologue au SIL0157, présent dans les colibacilles de séroytype 079 et 077 n'est pas amplifié par les amorces P388F/P388D et P388F/P388G. En conséquence, la présence d'un locus homologue à SILO,.57 dans ces colibacillles n'empêche pas la détection spécifique des STEC de sérotype 0157 à l'aide des amorces P388F/P388D et P388F/P388G. 2) 2 souches de sérotype 077 (STEC), 3 souches de sérotype 0145 (STEC) et une souche d'EPEC (0127:H6) donnent des résultats négatifs avec les 3 couples d'amorces ce qui indiquent qu'elles possèdent, inséré dans cette même région, un locus dont la séquence diffère de façon significative de celle du SILO157- 2 . Identification, d'un locus homologue au locus SILO157 dans un EPEC (0127 : H6) La souche d'EPEC E2348/69 (0127: H6) a été amplifiée à l'aide du couple d'amorces P388P/P388L, dans les conditions suivantes qui permettent d'amplifier des produits de grande taille : une étape initiale de dénaturation à 94 C pendant 10 min est suivie de 35 cycles alternant une étape de dénaturation à 94 C pendant 25 s, une étape d'hybridation des amorces à 62 C, pendant 25 s et une étape d'extension à 72 C, pendant 2 min 15 s et une étape finale d'élongation est effectuée à 72 C pendant 7 min. La souche d'E. coli 0157:H7 (souche EDL 933) est utilisée comme témoin positif de l'amplification. Les produits obtenus ont été hybridés avec une sonde dénommée sonde FD, correspondant au produit d'amplification de la souche 0157:H7 à l'aide des amorces P388F et P388D, dans les conditions décrites à l'exemple 1. Les résultats obtenus sont les suivants : - un produit d'amplification de 682 pb qui n'hybride pas avec la sonde FD est observé avec les souches qui ne possèdent pas de locus inséré entre les minutes 9 et 11 du génome d'E. coli non pathogènes, - un produit d'amplification de 3316 pb, hybridant avec la sonde FD est observé avec la souche 0157:H7 et - un produit d'amplification de taille légèrement supérieure à 3316 pb, hybridant avec la sonde FD est observé avec la souche 0127:H6. Ces résultats démontrent que la souche d'EPEC 0127:H6 contient un locus homologue au locus SILO157. Ils démontrent également que le locus SILO157 isolé dans la souche EDL933 de STEC-0157:H7 est présent dans : - tous les colibacilles producteurs de shigatoxines de sérotype 0157, - des souches d'E.coli pathogènes de sérotype 055 (STEC ou EPEC) ; qui s'explique par l'origine clonale des sérotypes 055 et 0157, et - dans d'autres sérotypes de STEC, notamment dans les colibacilles producteurs de shiga-toxines de sérotype 077,079 et 0145. La présence du locus SILO157 ou d'un locus homologue inséré entre les positions 93848 et 93849 du génome d'E.coli (en référence au génome d'E.coli non pathogènes de type K12,Genbank U82664) constitue donc un nouveau moyen de détecter spécifiquement des souches d'E.coli pathogènes et notamment l'ensemble des STEC-0157. REVENDICATIONS 1) Molécule d'acide nucléique issue d'une souche pathogène d'E. coli, caractérisée en ce qu'elle est sélectionnée dans le groupe constitué par : a) une molécule d'acide nucléique représentant un locus inséré dans le génome de ladite souche pathogène, à l'emplacement dudit génome correspondant à celui situé chez E.coli K12, entre les positions 93848 et 93849 de la séquence GenBank U82664 ; b) une molécule d'acide nucléique comprenant la molécule a) définie ci-dessus, et entre 1 et 2500 pb de la séquence en amont du site d'insertion de ladite molécule, et/ou entre 1 et 2500 pb en aval du site d'insertion de ladite molécule. c) une molécule d'acide nucléique constituant un fragment d'au moins 15 pb, de préférence d'au moins 25 à 30 pb, de la molécule a) ci-dessus ; d) une molécule d'acide nucléique constituant un fragment d'au moins 15 pb, de préférence d'au moins 25 à 30 pb, de la molécule b) ci-dessus, ledit fragment comprenant au moins une portion de la molécule a) et au moins une portion de la séquence en amont du site d'insertion de ladite molécule a) , ou au moins une portion de la séquence en aval du site d'insertion de ladite molécule a). 2) Molécule d'acide nucléique selon la revendication 1, caractérisée en ce que ladite bactérie pathogène est choisie parmi les Escherichia coli STEC de sérotype 0157,077, 079, ou 0145, les Escherichia coli STEC ou EPEC de sérotype 055, et les Escherichia coli EPEC de sérotype 0127. 3) Molécule d'acide nucléique selon une quelconque des revendications 1 ou 2, caractérisée en ce qu'elle est choisie parmi les séquences : SEQ ID NO :1, SEQ ID NO : 2, SEQ ID NO : 11 à SEQ ID NO : 17, SEQ ID NO : 19, SEQ ID NO : 21 et SEQ ID NO : 23. 4) Molécule d'acide nucléique capable de s'hybrider spécifiquement en conditions stringentes avec une molécule d'acide nucléique selon une quelconque des revendications 1 à 3. 5) Molécule d'acide nucléique selon la revendication 4, choisie parmi les oligonucléotides P388L (SEQ ID NO : 3), P388M (SEQ ID NO :4), P388G (SEQ ID NO :5), P388D (SEQ ID NO 6), P388F (SEQ ID NO : 7), P388C (SEQ ID NO : 8) et P388P (SEQ ID NO : 9). 6) Utilisation d'une molécule d'acide nucléique selon une quelconque des revendications 1 à 5 pour le dépistage d'E.coli pathogènes. 7) Procédé de dépistage d'E. coli pathogènes, caractérisé en ce qu'il comprend la détection de la présence dans le génome des bactéries E. coli présentes dans l'échantillon à tester, d'un locus inséré à l'emplacement dudit génome correspondant à celui situé chez E.coli K12, entre les positions 93848 et 93849 de la séquence GenBank U82664. 8) Procédé selon la revendication 7, caractérisé en ce qu'il comprend au moins une étape d'amplification en chaîne par polymérase à l'aide d'un couple d'amorces comprenant une amorce s'hybridant avec la région du génome d'E.coli définie par la séquence de 2500 pb en amont de la position 93848 de la séquence GenBank U82664, et une amorce s'hybridant avec la région du génome d'E.coli définie par la séquence de 2500 pb en aval de la position 93849 de la séquence GenBank U82664. 9) Procédé selon la revendication 8, caractérisé en ce que l'on utilise le couple d'amorces P388L/P388P. 10) Procédé selon la revendication 7, caractérisé en ce qu'il comprend au moins une étape d'amplification en chaîne par polymérase à l'aide d'un couple d'amorces s'hybridant avec des séquences internes d'une molécule a) selon la revendication 1. 11) Procédé selon la revendication 10, caractérisé en ce que l'on utilise un couple d'amorces choisi parmi l'utilisation des couples d'amorces suivants : P388C/P388D, P388F/P388D, P388F/P388G. 12) Procédé selon la revendication 7, caractérisé en ce qu'il comprend au moins une étape d'amplification en chaîne par polymérase à l'aide d'un couple d'amorces comprenant une amorce s'hybridant avec une séquence interne d'une molécule a) telle que définie ci-dessus, et une amorce s'hybridant avec la région du génome d'E.coli définie par la séquence de 2500 pb en amont de la position 93848 de la séquence GenBank U82664, ou une amorce s'hybridant avec la région du génome d'E.coli définie par la séquence de 2500 pb en aval de la position 93849 de la séquence GenBank U82664. 13) Procédé selon la revendication 12, caractérisé en ce que ledit couple d'amorces est choisi parmi P388P/P388D et P388L/P388M. 14) Procédé selon une quelconque des revendications 7 à 13, caractérisé en ce qu'il est mis en #uvre pour la détection d'E.coli de sérotype 0157 productrices de shiga-toxines 15) Protéine codée par un cadre ouvert de lecture présent sur une molécule d'acide nucléique selon une quelconque des revendications 1 à 3, et notamment sur une molécule issue d'une souche d'E.coli de sérotype 0157 productrice de shiga-toxines. 16) Protéine selon la revendication 15, caractérisée en ce qu'elle est choisie parmi les protéines IHP1 IHP2, IHP3, et IHP4 de séquences respectives SEQ ID NO : 18, 20,22 et 24. 17) Peptide, caractérisé en ce qu'il est constitué par un fragment d'au moins 5 acides aminés d'une protéine selon une quelconque des revendications 15 ou 16. 18) Molécule d'acide nucléique selon la revendication 1, codant une protéine ou un peptide selon une quelconque des revendications 15 à 17. 19) Molécule d'acide nucléique selon la revendication 18 caractérisée en ce qu'elle comprend une séquence sélectionnée dans le groupe constitué par les séquences SEQ ID NO : 17,19, 21 et 23. 20) Cassette d'expression, caractérisée en ce qu'elle comprend une molécule d'acide nucléique codant une protéine selon une quelconque des revendications 18 ou 19 placée sous contrôle transcriptionnel d'un promoteur approprié. 21) Vecteur d'acide nucléique, caractérisé en ce qu'il comprend un insert constitué par une molécule d'acide nucléique selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, 18, ou 19, ou une cassette d'expression selon la revendication 20. 22) Cellule transformée par au moins un vecteur selon la revendication 21. 23) Anticorps, dirigé contre une protéine ou un peptide selon une quelconque des revendications 15 à 17. 24) Utilisation d'une protéine ou d'un peptide selon une quelconque des revendications 15 à 17 pour la détection de souches d'E.coli pathogènes. 25) Utilisation d'un anticorps selon la revendication 23 pour la détection de souches d'E.coli pathogènes. 26) Utilisation selon une quelconque des revendications 6,24, ou 25, caractérisée en ce que lesdites souches d'E.coli pathogènes sont des souches d'E.coli de sérotype 0157 productrices de shiga-toxines, 27) Utilisation selon une quelconque des revendications 6, ou 24 à 26, caractérisée en ce que la recherche de souches d' E.coli pathogènes est effectuée dans un produit alimentaire. 28) Utilisation selon une quelconque des revendications 6, ou 24 à 26, caractérisée en ce que la recherche de souches d' E.coli pathogènes est effectuée dans un échantillon de fécès. 29) Utilisation d'une protéine ou d'un peptide selon une quelconque des revendications 15 à 17 pour la préparation d'un vaccin.