Brevet FR2802536A1 — publié le 20010622

OLIGOMANNOSIDES DE SYNTHESE, LEUR PREPARATION ET LEUR UTILISATION A LA DETECTION D'ANTICORPS ET A LA PREVENTION D'INFECTIONS La présente invention a pour objet des oligomannosides de synthèse, leur préparation et leur utilisation à la détection d'anticorps et à la prévention d'infections. Chez la levure opportuniste Candida albicans, comme chez tous les champignons, une partie considérable du métabolisme est dérivée vers la synthèse des polysaccharides pariétaux dont l'organisation module finement l'adaptation de la cellule au milieu. De nombreux groupes ont établi l'importance prépondérante du mannane de C. albicans dans la physiopathologie des candidoses. Il a ainsi été montré que les diverses interactions du mannane avec les composants humoraux et cellulaires de l'hôte reposent sur une spécificité dépendante des séquences oligomannosidiques synthétisées par la levure. C'est l'anomérie de liaison des résidus mannose et la longueur de la chaîne oligomannosidique qui détermine la nature de l'interaction qui conditionne l'issue de l'infection. Les travaux de recherche concernant les propriétés biologiques et la structure de ces oligomannosides, de même que bien entendu la mise au point de méthode diagnostic ou de prévention de ces infections, nécessitent de disposer de quantités importantes d'oligomannosides. Or, la production d'oligomannosides naturels à partir de souches de C. albicans est compliquée et coûteuse. Il s'agit bien entendu de disposer des souches et de les conserver, de les cultiver en fermenteur dans des conditions très standardisées car la nature des sucres dépend étroitement du milieu, de la température, de l'oxygénation, du temps de culture, etc.... La culture en fermenteur de C. albicans nécessite une grande expertise et de nombreuses précautions d'ordre microbiologique. Les lots de mannane doivent être ensuite récupérés de la culture et caractérisé pour leur propriétés antigéniques mais surtout chimiquement. Celle-ci nécessite une dépolymérisation du mannane et l'analyse en RMN des sucres libérés. Ces oligomannosides naturels sont bien entendu utilisés de la préparation de tests de diagnostic immunologique des infections par C. albicans. Or, la sensibilisation des plaques avec l'antigène mannane s'effectue avec des lots de production différents et selon un protocole qui ne permet aucun contrôle de la quantitée déposée. Ainsi, plusieurs tests utilisent des mannanes naturels de levures pour le diagnostic des candidoses (Sendid, B. et al., 1999, J. Clin. Microbiol. 37(5):1510-7) et de la maladie de Crohn (Sendid, B. et al., 1996, Clin. Diagn. Lab. Immunol. 3(2):219:26). Ces tests détectent des anticorps contre les mélanges de séquences oligomannosidiques présentes dans les mannanes de C. albicans et de S. cerevisiae. Afin de palier les inconvénients indiqués cidessus, les Inventeurs sont maintenant parvenus à produire par synthèse chimique en grande quantité et de manière reproductible des analogues des oligomannosides des enveloppes cellulaires des levures, ci-après désignés oligomannosides de synthèse, permettant de remplacer avantageusement les mannanes naturels. En effet, les travaux de recherche réalisés avec ces oligomannosides de synthèse ont montré qu'ils miment les propriétés biologiques des sucres naturels de C. albicans notamment en ce qui concerne l'adhérence aux cellules de mammifère. Ainsi, les Inventeurs ont mis en évidence que des oligomannosides de synthèse pouvaient être utilisés avec succès pour la sensibilisation de plaques de microtitration par couplage covalent en vue de la détection d'anticorps spécifiques de chaque structure dont la signification diagnostique et pronostique est différente (Jouault, T., 1997, Clin. Diagn. Lab. Immunol. 4(3):328-33). En outre, les inventeurs ont mis en évidence que ces oligomannosides de synthèse présentaient des propriétés remarquables d'inhibition de la colonisation par C. albicans permettant de les utiliser pour la prévention et le traitement des candidoses. La présente invention a donc pour objet un oligomannoside produit par synthèse chimique homologue à un oligomannoside de la paroi d'un organisme infectieux ou pathogène. Plus particulièrement ledit organisme est une levure, un champignon, un virus, une bactérie dont l'enveloppe cellulaire contient des oligomannosides. Par enveloppe cellulaire, on entend aussi bien la membrane, la paroi, la capsule cellulaire. L'invention concerne tout particulièrement les levures, et spécifiquement de Candida albicans ou Saccharomyces cerevisiae. On entend par homologue, le fait que les oligomannosides de synthèse de l'invention présentent les mêmes motifs de mannose selon le même enchaînement de liaisons a ou (3, (1-2), (1-3), (1-6), que les oligomannosides naturels des levures, notamment de Candida albicans ou de Saccharomyces cerevisiae, mais sont dépourvus des autres composants cellulaires, notamment les protéines, les sucres, les lipides, qui sont inévitablement associés aux oligomannosides naturels décrits dans l'art antérieur. On entend par dérivé d'un oligomannoside de synthèse de l'invention, un oligomannoside dans lequel un ou plusieurs des groupements fonctionnels sont substitués, par exemple par un groupe protecteur, ou encore des oligomannosides de synthèse conjugués à un groupement de liaison, aussi désigné connecteur, pour le greffage sur un support comme une plaque de microtitration. L'invention se rapporte plus particulièrement à des oligommanosides de synthèse répondant à la formule générale suivante : [Mana(1-3)]p[Mana(l-2)]q[Man3 ( 1-2)]r (a ou P)Man-OR dans laquelle : - R représente un atome d'hydrogène, un groupe alkyle en C, à C2o, et de préférence en C15 à C201 un groupe connecteur, éventuellement marqué par exemple par un groupe chromophore ou fluorescent, ou encore, comme il sera décrit plus loin une substance capable de rendre l'oligommanoside de synthèse immunogène, - p, q, et r sont des nombres entiers entre 0 et 19 et de préférence entre 0 et 11 et la somme de p+q+r est comprise entre 1 et 19 et de préférence entre 1 et 11, - les trois parties du polymère [Mana(1- 3)]p[Mana(1-2)]q[Man(3(1-2)]r peuvent être inversées ou répétées. Parmi les oligomannosides de synthèse cidessus, l'invention se rapporte plus particulièrement aux tétramannosides, et de manière toute spécifique aux tétramannosides de synthèse suivants : # D-Man P(1-2) D-Man P(1-2) D-Man (1-2) D-Man, de C. albi cans, également désigné ci-après Mss-1-2tétramannosides, répondant à la formule (I) suivante : dans laquelle R représente un atome d'hydrogène, un alkyle en Cl à C20, et de préférence en C15 à C20, ou un groupe connecteur, éventuellement marqué, ou encore une substance capable de rendre l'oligomannoside immunogène, ou un dérivé de celui-ci dont un ou plusieurs des groupes hydroxyles sont substitués. #D-Man Oc ( 1-2 ) D-Man oc ( 1-2 ) D-Man a(1-2) D-Man, de C. albicans, également désigné ci-après Ma-1-2- tétramannosides, répondant à la formule (II) suivante : dans laquelle R à la même signification que dans la formule (I). # D-Man a(1-3) D-Man a(1-2) D-Man a(1-2) D-Man a (1-2) de S. cerevisiae, répondant à la formule (III) suivante : dans laquelle R à la même signification que dans la formule (I). La présence d'un groupe R représentant un connecteur est utile pour la préparation de tests de détection de la présence chez un sujet d'anticorps spécifiques de certains oligomannosides pour le diagnostic d'une infection par C. albicans ou de maladies inflammatoires chroniques de l'intestin et notamment de la maladie de Crohn comme il sera décrit plus loin. Le connecteur peut être tout groupe chimique permettant de coupler, de préférence par covalence mais aussi par d'autres liaisons par exemple de type hydrophobe, les oligomannosides de synthèse sur un support comme une plaque de microtitration. Le couplage covalent offre l'avantage d'utiliser une surface robuste et adaptée au test d'immunoanalyse, il permet une meilleure orientation des oligomannosides de synthèse et aussi de disposer d'une densité plus élevée d'épitopes et évite les problèmes de reconnaissance de l'anticorps car les sites antigéniques sont bien accessibles. On préfère des connecteurs comportant une fonction acide carboxylique qui pourra être activée pour le couplage sur une surface elle-même activée pour réagir avec les oligomannosides de synthèse. A titre d'exemple de connecteur, on peut citer le connecteur de R. U. Lemieux (Lemieux, R. U. et al., 1975, J. Am. Chem. Soc. 97,4076- 4083), où R représente un groupe de formule : -CHZ- (CHZ ) -C02H . Les connecteurs portant un groupe acide carboxylique, comme le connecteur de R. U. Lemieux peuvent être activés par un carbodiimide afin d'obtenir un ester activé qui permet la formation de liaisons amides avec des groupes amines primaires à la surface du support. La carbodiimide hydro-soluble (EDC : 1-ethyl-3-(3-dimethylaminopropyl)carbodiimide) est utilisée pour activer les groupements-COOH de l'oligomannoside de synthèse en présence de sulfo-N-hydroxy succinimide (sulfo-NHS : Nhydroxysuccinimidine). Le sulfo-NHS supprime de manière efficace l'hydrolyse du produit activé et permet la fixation de l'oligomannoside de synthèse à la surface de la plaque déjà sensibilisée par le groupement -NH2. Les oligomannosides de synthèse de l'invention peuvent être préparés par condensation de monosaccharides ou disaccharides protégés, de préférence, par condensation de dimannosides protégés selon une stratégie par dibloc. Une forme de mise en #uvre préférée d'une stratégie dibloc pour la préparation d'oligomannosides selon l'invention consiste à : a) préparer des diblocs dont : - l'un au moins des deux blocs est le bloc intermédiaire, où les fonctions hydroxyles libres de chaque monosaccharide sont substituées par un ou plusieurs groupes protecteurs identiques ou différents, sauf celle nécessaire à la condensation avec un autre dibloc qui est activée par un groupe partant, - l'un des deux blocs est le bloc terminal, où les fonctions hydroxyles libres de chaque monosaccharide sont substituées par un ou plusieurs groupes protecteurs identiques ou différents, sauf celle nécessaire à la condensation avec un autre dibloc, et éventuellement celle substituée par un groupe de liaison pour la fixation de l'oligomannoside sur un support, b) à condenser lesdits diblocs, puis à déproteger l'oligomannoside ainsi préparé. Un exemple de dimannosides Mana(1-2)Man pour la mise en #uvre du procédé ci-dessus répond à la formule (IV) suivante : dans laquelle : - R est un groupe protecteur permanent. On entend par groupe protecteur permanent, un groupe protecteur qui est introduit en début de synthèse et retirer à la fin de la synthèse de l'oligomannoside. A titre d'exemple d'un tel groupe protecteur permanent, on peut citer un groupe benzyle. - R1 est un groupe protecteur temporaire. On entend par groupe protecteur temporaire, un groupe protecteur qui est enlevé pour permettre la condensation. A titre d'exemple d'un tel groupe protecteur temporaire, on peut citer le groupe acétate. - R2 est : dans le cas d'un bloc intermédiaire, un groupe partant et dans ce cas le bloc peut être associé au reste du polymère en a ou ss; à titre d'exemple d'un tel groupe partant, on peut citer -O-C (NH)-CCl3 ou PhS, dans le cas d'un bloc terminal, un groupe choisi parmi un groupe alkyle, benzyle, ou encore un connecteur, en a ou ss. Un exemple de dimannosides Manss(1-2)Man pour la mise en #uvre du procédé ci-dessus répond à la formule (V) suivante : dans laquelle : - Ri est un groupe protecteur temporaire ; titre d'exemple d'un tel groupe protecteur temporaire, on peut citer un groupe terbutyl diméthyl silyl - R2 est : dans le cas d'un bloc intermédiaire, un groupe partant et dans ce cas le bloc peut être associé au reste du polymère en [alpha] ou P; à titre d'exemple d'un tel groupe partant, on peut citer SPh ou SOPh; dans le cas d'un bloc terminal, un groupe choisi parmi un groupe alkyle, benzyle, ou encore un connecteur, en a ou ss. Un exemple de dimannosides Mana(1-3)Man pour la mise en oeuvre du procédé ci-dessus répond à la formule (VI) suivante : dans laquelle : - R est un groupe protecteur permanent ; à titre d'exemple d'un tel groupe protecteur permanent, on peut citer le groupe benzyle, - R1 est un groupe protecteur temporaire ; à titre d'exemple d'un tel groupe protecteur, on peut citer le groupe acétate, - R2 est : dans le cas d'un bloc intermédiaire, un groupe partant et dans ce cas le bloc peut être associé au reste du polymère en a; à titre d'exemple d'un tel groupe partant, on peut citer un groupe thiophényle (SPh), . dans le cas d'un bloc terminal, un groupe choisi parmi un groupe alkyle, benzyle, ou encore un connecteur, en a ou ss. Les dimannosides ci-dessus peuvent être utilisés pour la préparation de tetramannosides de l'invention. Le tétramanoside D-Man ss(1-2) D-Man (1-2) DMan ss(1-2) D-Man de formule (I), peut être préparé à partir de deux blocs Manss(1-2) de formule (V), dont l'un est un dibloc intermédiaire dans lequel R2 est un groupe partant, par exemple R2 = -SOPh, formant une liaison ss, et l'autre un dibloc terminal dans lequel R2 par exemple un SPh. Le tétramanoside D-Mana(l-2)D-Mana(l-2)D- Mana(1-2)D-Man, de formule (II) peut être préparé à partir de blocs Mana(1-2)Man de formule (IV), dont l'un est un dibloc intermédiaire dans lequel R2 est un groupe partant, par exemple R2 représente un groupe -C(NH)-CC13, et l'autre un dibloc terminal dans lequel R2 est-SPh. Le tétramanoside D-Manoc(1-3) D-ManOC(1-2) D- Mana(1-2) D-Mana(1-2), de formule (III) peut être préparé à partir d'un dibloc Mana(1-3)Man de formule (VI) et d'un dibloc Mana(l-2)Man de formule (IV), le dibloc intermédiaire est Mana(l-3)Man de formule (VI) dans lequel R2 est un groupe partant, par exemple R2 est-SPh, et le dibloc terminal est Mana(1-2)Man dans lequel R2 représente le groupe R défini dans la formule (III). Comme indiqué précédemment, les oligomannosides de synthèse de l'invention sont utiles pour la détection in vitro sur un échantillon d'un patient de la présence d'une infection par un organisme infectieux ou pathogène, notamment une levure, un champignon, un virus, une bactérie dont l'enveloppe cellulaire contient des oligomannosides. Un tel procédé consiste à mettre en contact au moins un oligomannoside de synthèse défini précédemment avantageusement préalablement fixé sur un support solide avec un échantillon biologique susceptible de contenir des anticorps dirigés contre l'organisme infectieux ou pathogène, puis la détection par tout moyen approprié d'un complexe antigène-anticorps. L'invention concerne plus particulièrement le diagnostic d'un infection par de C. albicans et de S. cerevisiae. Ainsi, les inventeurs ont mis en évidence que les tetramannosides D-Manp(1-2)D-Manp(1-2)D-Manp(1-2)D-Man de formule (I) et D-Manoc ( 1-2 ) D-Man a(l-2)D-Mana(l-2)D-Man, de formule (II) permettent une détection spécifique d'une infection par C. albicans, donc le diagnostic des candidoses. De même, les inventeurs ont mis en évidence que le tetramannoside D-Man oye(1-3) D-Man oc ( 1-2 ) D-Man a, ( 1-2 ) D-Man a (1-2) de formule (III) permet une détection spécifique d'une infection par S. cerevisiae et peut avantageusement mis en #uvre dans des tests ASCA pour le diagnostic de la maladie de Crohn. Les inventeurs ont encore montré que de façon surprenante le tetramannoside D-Man ou(1-3) D-Man ou(1-2) D- Man a(1-2) D-Man a (1-2) de formule (III) pouvait être utilisé dans le cadre des tests ASCA pour le diagnostic des hépatites virales ou autoimmunes. L'invention concerne donc encore un kit pour le diagnostic sur un échantillon biologique d'un patient d'une infection par un organisme infectieux ou pathogène, notamment une levure, un champignon, un virus, une bactérie dont l'enveloppe cellulaire contient des oligomannosides. Un tel kit comprend au moins un oligomannoside de synthèse défini précédemment, avantageusement fixé sur un support solide, comme une plaque ELISA, des moyens pour détecter la formation de complexes antigène-anticorps, et éventuellement des réactif témoins. Les travaux de recherche réalisés dans le cadre de l'invention ont permis de découvrir que les oligomannosides de synthèse définis précédemment peuvent être utilisés pour inhiber la colonisation par les agents infectieux ou pathogènes dont les membranes contiennent des oligomannosides. En effet, les levures du genre Candida utilisent des sucres de surface de leur paroi pour s'attacher aux cellules de leur hôte, cellules du vagin ou du tube digestif. Ainsi, les inventeurs sont parvenus à mettre en évidence que les anticorps contre des sucres notamment de levures protègent des infections notamment celles déterminées par C. albicans, voire d'autres microbes exprimant les mêmes sucres par exemple LPS des Salmonella, E. Coli) Plus particulièrement, les inventeurs ont montré, dans un modèle de candidose vaginale que le tetramannoside D-Manp(1-2)D-Manp(1-2)D-Manp(1-2)D-Man de formule (I) réduisait la colonisation par C. albicans de manière très significative. De même le tetramannoside D- Manp(1-2)D-Manp(1-2)D-Manp(1-2)D-Man de formule (I) s'est avéré très protecteur dans des modèles expérimentaux de candidose disséminés. En conséquence, l'invention concerne des conjugués formés d'un oligomannoside de synthèse couplé à une substance capable de rendre les sucres immunogènes, comme par exemple l'anatoxine tétanique, ainsi que les anticorps monoclonaux ou polyclonaux dirigés spécifiquement contre lesdits conjugués. Ces anticorps sont utiles comme outils de recherche mais aussi pour la mise au point d'outil de diagnostic. L'invention concerne aussi les composition pharmaceutique comprenant à titre d'agent actif au moins un de ces conjugués avantageusement associé dans la composition à un véhicule pharmaceutiquement acceptable. Ces compositions pharmaceutiques peuvent être appliquées localement ou généralement de façon à induire une inhibition de la colonisation ou une protection par immunisation locale ou générale selon le type d'infection observée. L'invention envisage plus spécifiquement les conjugués formés à partir de D-Manp(l-2)D-Manp(l-2)D- Manp(1-2)D-Man. D'autres avantages et caractéristiques de l'invention apparaîtront dans les exemples qui suivent concernant la préparation d'oligomannosides de l'invention et leur utilisation pour le diagnostic, la prévention et le traitement d'infections, et où il sera fait référence aux dessins en annexe dans lesquels : La figure 1 représente le schéma réactionnel de la préparation de D-Man (3(1-2) D-Man (3(1-2) D-Man (3(1-2) DMan de formule (I). La figure 2 représente le schéma réactionnel de la préparation de la préparation de D-Man a (1-2) D-Man oc(1-2) D-Man ou(1-2) D-Man de formule (II). La figure 3 représente le schéma réactionnel de la préparation de D-Man oc ( 1-3 ) D-Man oc ( 1-2 ) D-Man oc ( 1-2 ) D-Man a (1-2) de formule (III) . La figure 4 représente le schéma réactionnel de la préparation de dimannosides Manss(1-2)Man. Les figures 5 et 6 rapportent les tests effectués respectivement avec le D-Man a(1-2) D-Man [alpha](1-2) D-Man oc ( 1-2 ) D-Man a (1-2) et le D-Man (3(1-2) D-Man P(l-2) D-Man (3(1-2) D-Man sur le facteur 5 spécifique des ss-1,2 oligomannosides et le facteur 1 réagissant avec les a-1,2 oligomannosides vis à vis des mannotétraoses de synthèse d'anomérie a et ss-1,2. La figure 7 représente la réactivité du D-Man ss(1-2) D-Man ss(1-2) D-Man (3(1-2) D-Man avec plusieurs anticorps monoclonaux. La figure 8 représente la réactivité antigénique du mannotetraose de synthèse D-Man a(1-3) DMan a(1-2) D-Man a(1-2) D-Man vis-à-vis du facteur antigénique 34. La figure 9 représente la réactivité sérologique d'un pool de sérums de patients atteints de la maladie de Crohn vi-à-vis du mannotetraose de synthèse. La figure 10 rapporte l'inhibition de la colonisation dans un modèle de candidose vaginale expérimentale de la rate par les tétramannosides de l'invention. Exemple 1 : Préparation de D-Man (3(1-2) D-Man ss(1-2) D-Man (3(1-2) D-Man de formule (I). I - Schéma réactionnel. La figure 1 en annexe représente le schéma réactionnel de la préparation de D-Man (3(1-2) D-Man ss(1-2) D-Man (1-2) D-Man de formule (I). - le composé de formule 1 (Stutz, A. et al., 1985, Carbohydr.Res. 137,282-290) est préparé par réaction de PhCH(OMe)2 sur le phényl 1-thio-a-D-mannopyranoside (Maity, S. K. et al., 1994, Tetrahedron, 50,6965-6974) dans le DMF en présence de HBF4 Et20. Une benzylation sélective donne le composé 2. Ce dernier est silylé et oxydé pour donner le composé 4. La réaction (a) est réalisée dans les conditions suivantes : BnBr, BU2SnO, NBu4Br, toluène, 110 C. La réaction (b) est réalisée dans les conditions suivantes : TBDMSOTf, Et3N, CH2C12. La réaction (c) est réalisée dans les conditions suivantes : MCPBA, CH2C12, -40 C. Les disaccharides et tétrasaccharides portant un thiophényl sont préparés tout d'abord en condensant les composés 2 et 4. La condensation entre 2 et 4 donne le disaccharide 5, celui ci peut être activé en sulfoxyde pour donner le composé 7 ou déprotéger en position 2' pour donner l'accepteur 6. La condensation des composés 6 et 7 donne le tétrasaccharide clé 8. La réaction (d) est réalisée dans les conditions suivantes : Tf20, 2,6-diterbutyl-pyridine ou 2,6-diterbutyl-4-methyl pyridine (DBMP), CH2C12, -78 C. La réaction (e) est réalisée dans les conditions suivantes : b) NBu4F.3H20, THF. La réaction (f) est réalisée dans les conditions suivantes : MCPBA, -40 C, CH2Cl2. La réaction (g) est réalisée dans les conditions suivantes : Tf20, DBMP, CH2C12, -0 c. Le 8-methoxycarbonyloctanol a été choisi comme connecteur. Ce dernier peut être préparé selon Lemieux (Lemieux, R. U. et al. 1975, J. Am. Chem. Soc. , 97,4076- 4083) à partir de l'acide azélaïque ou mieux par ozonolyse de l'oléate de méthyle et réduction in situ de l'aldéhyde formé par NaBH4 (Gerlach, H. et al. 1978, Helv. Chim. Acta, 61,1226-1231) Ce composé 8 est ensuite transformé en 9 par élimination du silyle par NBu4NF, réaction avec l'eau en présence de NBS, puis en le tétramannoside de formule (I) dans laquelle R est H par déprotection des benzyles et benzylidènes. La glycosylation du composé 8 avec le 8methoxycarbonyloctanol donne le composé 10 qui donne après déprotection le tétramannoside de formule (I) dans laquelle R est - ( CHz ) 8-COZMe . La réaction (h) est réalisée dans les conditions suivantes : NBu4F.3H20, THF; puis NBS, H20, acétone. La réaction (i) est réalisée dans les conditions suivantes : NBS, TfOH, 8-methoxycarbonyloctanol, tamis moléculaire 4 Angstrom, CH2C12. La réaction (j) est réalisée dans les conditions suivantes : H2, Pd/C, MeOH, AcOEt. La réaction (k) est réalisée dans les conditions suivantes : 1-NBU4NF.3H20, THF ; 2-H2, Pd/C, MeOH, AcOEt, 3-NaOH, THF, H20. II - Protocole expérimental. 1) Généralités. Les points de fusion ont été mesurés sur un appareil capillaire Buchi 510 et n'ont pas été corrigés. Les pouvoirs rotatoires ont été mesurés à température ambiante à l'aide d'un polarimètre Perkin-Elmer 241. Les spectres de masse en mode d'ionisation chimique (ammoniac) ont été obtenus avec un spectromètre Nermag R10-10. Les analyses élémentaires ont été effectuées par le Service de Micro Analyse de l'Université Pierre et Marie Curie (Paris VI). Les spectres RMN du proton ont été enregistrés sur des appareil Bruker à 250 ou 400 MHz en solution dans le chloroforme deutérié. Les déplacements chimiques sont donnés en ppm par rapport au TMS et les abréviations utilisées sont les suivantes : s (singulet); se (singulet élargi); d (doublet) ; de (doublet élargi); t (triplet); q (quadruplet) et m (multiplet); by (benzylidène). Les chromatographies sur couches minces ont été réalisées sur plaques de silice Merck 60 F254 et révélées par vaporisation d'une solution alcoolique d'acide sulfurique concentré (20% v/v) et chauffage. Les chromatographies sur colonne (flash) ont été faites sur gel de silice 60 (230- 400 mesh, Merck). 1) Phenyl 3-0-benzyl-4,6-0-benzylidene-l-thio- a-D-mannopyranoside (2). Ce composé est décrit dans la littérature : Z Szurmai, L Balatoni, A.Liptak, Carbohydr. Res. 254 (1994) 301-309 et T Oshitari, S Kobayashi, Tetrahedron Lett (1995) 1089-92. La description ci-après rapporte une synthèse utilisable sur de grandes quantités (avec deux variantes correspondant à deux solvants différents). - Méthode 1 (le solvant est le toluène): A une solution de 1 (composé connu : H Franzyk, M Medal, H Paulsen, K Bock J. Chem Soc. Perkin Trans I, (1995) 2883-98 avantageusement préparé selon R. Albert, K Dax, R. Pleschko, A Stütz, Carbohydr. Res. 137 (1985) 282- 290) (10g, 28 mmol) dans 295 mL de toluène anhydre, on ajoute 7. 59g d'oxyde de dibutylétain. Le mélange est porté à reflux du toluène avec un appareil de Dean Stark pendant une nuit. De l'iodure de tétrabutylammonium (6. 59g), puis du bromure de benzyle (4. 3mL) sont ajoutés. L'agitation est maintenue 3h sous reflux, puis on ramène à température ambiante (contrôle cyclohexane/acétate d'éthyle=3/1)) et concentre sous vide le mélange. On obtient un résidu, qui est purifié par chromatographie sur colonne (élution:cyclohexane/acétate d' éthyle=4/1) pour donner le produit 2 (llg, 89%). - Méthode 2 (le solvant est l'acétonitrile): On introduit dans un ballon, le composé 1 (9. 05 g, 25.11 mmol) et 450 mL d'acétonitrile anhydre. On chauffe au reflux du CH3CN sous argon (le composé 1 se dissout dans l'acétonitrile à chaud). Quand la solution est limpide, on ajoute 23. 53 g de tamis 4 en poudre, 7. 51 g de Bu2SnO. On laisse au reflux pendant 6 heures. On laisse revenir à température ambiante. On ajoute 8. 10 g de nBu4N+Br- (1 éq), 6. 3 mL de bromure de benzyle (2. 3 éq) et agite pendant la nuit à 45 C. On filtre à travers un entonnoir fritté recouvert de célite, on rince les solides avec du dichlorométhane et concentre sous vide. On obtient un résidu, qui est purifié par chromatographie sur colonne (élution:cyclohexane/acétate d'éthyle= 3/1) pour donner le produit 2 (10. 2 g, 90%) 1H-RMN :(250 MHz, CDC13) : 8:5.55 (s, 1H, By) ; 5. 52 (s, 1H, H-l); 4. 82 (d, 1H, J gem=11.79 Hz, CHPh); 4. 67 (d, 1H, J gem=11.75 Hz, CHPh); 4. 27 (ddd, 1H, H-5); 4. 21 (d, 1H, J 2-3=3.54 Hz, H-2); 4.14 (dd, 1H, J 6a-6b=9-73 Hz et J 6a-5=4. 80 Hz, H-6a); 4. 11 (t, 1H, H-4); 3. 89 (dd, 1H, J 3-4=9.50 Hz et J 3-2=3 .37 Hz, H-3 ) ; 3 . 78 (t, 1H, J 6b- 5=10. 18 Hz et J 6b-6a=10.18 Hz, H-6b); 2. 79 (s, 1H, O-H). 2 ) Phenyl 2-0-tertbutyldimethylsilyl-3-0- benzyl-4,6-benzylidene-1-thio-oc-D- mannopyranoside (3). On introduit dans un ballon, sous atmosphère d'argon, le composé 2 (5. 51 g, 12.23 mmol) et 55 mL de dichlorométhane anhydre. On ajoute sous agitation : mL de triéthylamine (3.1 éq), 4. 65 mL de triflate de terbutyldiméthylsilyle (1.65 éq). On agite pendant une nuit à température ambiante. On contrôle l'état d'avancement de la réaction par CCM (élution:cyclohexane/acétate d'éthyle=3/1). On neutralise avec une solution aqueuse de NaHC03, La phase organique est concentrée sous vide pour donner un résidu, qui est purifié par chromatographie sur colonne (élution:cyclohexane/acétate d'éthyle=96/4), pour donner le produit 3 (6. 2 g, 90%). Rf:(cyclohexane/AcOEt= 96/4): 0.43. [[alpha]]D = +122 (c 1,2; CHC13) 1H-RMN (250 MHz,CDCl3) :#:5.55 (s, 1H, By); 5. 24 (d, 1H, J 1-2=1.4 Hz, H-l); 4. 69 (dd, 2H, CHPh); 4. 26- 4. 08 (massif, 4H); 3. 83-3.65 (massif, 2H); 0. 81 (s, 9H, SitBu); 0. 00 (s, 3H, Si-Me); -0. 4 (s, 3H, Si-Me). Analyse pour C32H4o05SSi (564.821) : calculée C :68.04 H:7.14 trouvée C:68.15 H:7.27 3) Phenyl (2-0-tertbutyldimethylsilyl- 3-0benzyl- 4,6-0-benzylidene- a-D-mannopyranosyl) sulfoxide (4) . On introduit dans un ballon, sous atmosphère d'argon, le composé 3 (6. 2 g, 10.97 mmol) et 125 mL de dichlorométhane anhydre. Dans le ballon refroidi à -78 C, on ajoute de l'acide 3-chloro perbenzoique (12. 06 mmol) en solution dans 26 mL de dichlorométhane. On maintient la température à -78 C pendant 15 minutes puis laisse revenir doucement à -30 C. On ajoute (CH3)2S pour éliminer l'excès de peracide. On neutralise avec une solution saturée de NaHC03, lave avec une solution saturée de NaCl, extrait les phases aqueuses avec du dichlorométhane. La phase organique est séchée (MgS04), filtrée puis concentrée. On obtient un résidu, qui est purifié par chromatographie sur colonne (élution:cyclohexane/acétate d'éthyle=5/1), pour donner 4 (5. 04g, 79% en diastéréoisomère majoritaire). Lors de la chromatographie on récupère l'autre diastéréoisomère en proportion très minoritaire 5%). Caractéristiques de l'isomère majoritaire : [[alpha]]D = -67 (c 1,0; CHC13) 1H-RMN :(400 MHz,CDCl3) :#7, 70-7,20(m, 15 H, arom); 5.69 ( s, 1H, By); 4.93 et 4; 82 ( 2d, 2H, CHPh); 4. 73 (dd, 1H, J1,2=1,2, J2,3 2. 3Hz, H-2); 4. 39 (d, 1H, H-1); 4. 30 (dd, 1H, J3,4=9,9; J4,5 9,9Hz ; H-4); 4. 28 (dd, 1H, H- 3); 4. 26 (dd, 1H, J6a, 6b 10.3; J6b,5=5,8Hz, H-6b); 4. 14 ( ddd, 1H, J5,6a=120,lHz, H-5) ; 3.79(dd, 1H, H-6a) ; 0. 88 (s, 9H, tBu); 0. 072 et-0.046 ( 2s, 6H, MeSi); Spectre de masse : m/z 598 (M+NH4)+. Analyse pour C32H4006SSi (564.821) : calculée C: 66. 17 H :6.94 trouvée C :66.30 4) Phényl 2-0-(3-0-benzyl- 4,6-0-benzylidène- 2-0-tertbutyldiméthylsilyl--D-mannopyranosyl)- 3-0-benzyl- 4,6-0-benzylidène-1-thio-a-D-mannopyranoside (5). 7. 1 g (12.22 mmol, 1 éq) de 4 et 9. 06 mL (40.3 mmol, 3. 3 éq) de 2,6-ditertbutylpyridine sont dissous dans 200 mL de dichlorométhane anhydre et sont placés sous atmosphère d'argon. Après avoir refroidi la solution à -78 C, 2.27 mL (13.44 mmol, 1.1 éq) d'anhydride de l'acide trifluorométhanesulfonique sont ajoutés. Après 5 mn d'agitation à -78 C, 11 g (24.4 mmol, 2 éq) de 2 préalablement dilués dans 100mL de dichlorométhane anhydre sont additionnés goutte à goutte. La température est maintenue 1 heure à -78 C et laissée lentement remonter à 0 C. Le milieu reactionnel est alors neutralisé par une solution d'hydrogénocarbonate de sodium. La phase organique est ensuite lavée par une solution aqueuse de NaCl, séchée sur sulfate de magnésium, filtrée et évaporée sous vide. Une chromatographie sur gel de silice (élution:cyclohexane/acétate d'éthyle=96/4) du brut permet d'obtenir 5 (7. 97 g, 72%) sous la forme d'une mousse blanche. pf : 81-83 C(hexane); [[alpha]]D +12. 5 (c 1.02, chloroforme) 1H-R.M.N. (400MHz, CDC13) : # 7.58-7.34m( 25H, arom.),5.66 et 5.65 (2s, 2H, by), 5.56 (d, 1H, J 1-2=lHz, H-1A), 4. 85 (2d, 2H, J gem=12Hz, CHPh), 4. 8 (d, 1H, J gem=12Hz, CHPh), 4. 75 (d, 1H, J-gem=12Hz, CHPh), 4. 53 (dd, 1H, J 2-l=lHz et J 2-3=3.3Hz, H-2A) , 4.52 (se, 1H, H-1B) , 4. 45-4.4 (m, 1H, H-5A) , 4. 37 (t, 1H, J 4-3=J 4-5=9.5Hz, H- 4A), 4. 31 (dd, 1H, J 6b-6a=lOHz et J 6b-5=4.3Hz, H-6Ab), 4. 26 (dd, 1H, J 6b-6a=10. 3Hz et J 6b-5=4.8Hz, H-6Bb), 4. 21 (t, 1H, J 4-3=J 4-5=9.5Hz, H-4B), 4. 19 (de, 1H, J 2- 3=2.7Hz, H-2B), 4 (dd, 1H, J 3-2=2.7Hz et J 3-4=9.5Hz, H- 3A), 3. 91 (t, 1H, J 6a-6b=J 6a-5=10Hz, H-6Aa), 3. 84 (t, 1H, J 6a-6b=J 6a-5=10.2Hz, H-6Ba), 3. 59 (dd, 1H, J 3-2=2.7Hz et J 3-4=9.5Hz, H-3B), 3. 35 (dt, 1H, J 5-4=J 5-6a=10.2Hz et J 5-6=4.8Hz, H-5B), 1. 0 (s, 9H, SiC (CH3)3), et 0,23 (2s, 6H, Si(CH3)2). 13C R. M.N. (100 MHz) : 8 138.55, 138. 3, 137. 5, 137. 4, 133. 6 (5 C arom.), 131. 8-126.06 (25 CH arom), 101. 6 (CH by), 101.4 (CH by), 99. 8 (1JCH=157Hz, C-1B), 86. 7 (1JCH=166Hz, C-1A), 78. 7 (C-4B), 78. 2 (C-4A), 77. 5 (C-3B), 76. 4 (C-2A), 74 (C-3A), 72. 2 (CH2Ph), 71. 7 (C-2B), 70. 7 (CH2Ph), 68. 5 (C-6B), 68. 47 (C-6A), 67. 7 (C-5B), 65. 2 (C- 5A), 26 (C(CH3)3), 18. 5 (C(CH3)3), -4 (SiCH3), -4. 5 (SiCH3). Spectre de masse : m/z 922 (M+NH4)+. Analyse pour C52H60O10SSi (905.199) : calculée C :68.99 H :6.68 trouvée C :68.82 5) Phényl 2-0-(3-0-benzyl-4,6-0-benzylidène-pD-mannopyranosyl)-3-0-benzyl-4,6-0-benzylidène-1-thio-a-D- mannopyranoside (6). 3. 8 g (4.2 mmol, 1 éq) du produit 5 et 6. 6 g (21 mmol, 5 éq) de fluorure de tetrabutylammonium trihydrate sont dissous dans 60 mL de tetrahydrofurane. Après 1 heure à température ambiante, le milieu est dilué par du dichlorométhane et la phase organique est lavé par de l'eau. La phase organique est séchée sur sulfate de magnésium, filtrée et évaporée sous pression réduite. Une chromatographie sur gel de silice (élution:cyclohexane/acétate d'éthyle=3/1) fournit 6 (3. 0 g, 90%) sous forme d'une poudre blanche. pf : 79- 81 C (hexane) ; [[alpha]]D +30 (c 0. 33, chloroforme) 1H-R.M.N. (400MHz, CDC13) : S 7.54-7.30m(, 25H, arom.),5.59 et 5.51 (2s, 2H, by) , 5. 54 (d, 1H, J 1-2=lHz, H-1A), 4. 89 (d, 1H, J gem=12.2Hz, CHPh), 4. 86 (d, 1H, J gem=11.8Hz, CHPh), 4.82 (d, 1H, J gem=11.8Hz, CHPh), 4.8 (d, 1H, J gem=12. 2Hz, CHPh), 4. 77 (d, 1H, J 1-2=0.8Hz, H- 1B), 4.66 (dd, 1H, J 2-1=lHz et J 2-3=3.3Hz, H-2A), 4. 33 (dt, 1H, J 5-4=9.7Hz et J 5-6a=J 5-6b=4.9Hz, H-5A), 4. 32 (t, 1H, J 4-3=J 4-5=9.3Hz, H-4B), 4. 26 (dd, 1H, J 6b- 6a=10.5Hz et J 6b-5=4. 9Hz, H-6Bb), 4. 3 (dd, 1H, J 6b- 6a=lOHz et J 6b-5=5Hz, H-6Ab), 4. 24 (t, 1H, J 4-3=J 4- 5=9.7Hz, H-4A), 4. 19 (de, 1H, J 2-3=3.9Hz, H-2B), 4. 04 (dd, 1H, J 3-2=3.3Hz et J 3-4=9.7Hz, H-3A), 3. 8 (m, 2H, H-6Aa et H-6Ba), 3.72 (dd, 1H, J 3-2=3.9Hz et J 3-4=9.2Hz, H-3B), 3. 43 (dt, 1H, J 5-4=J 5-6a=9.5Hz et J 5-6b=4.9Hz, H-5B), 3. 2 (br, 1H, OH). 13C R. M.N. (100 MHz) : # 138,137.8, 137. 3, 137. 29, 131. 7 (5 C arom.), 129. 2-127.7 (25 CH arom), 101. 4 (CH by), 101. 2 (CH by), 97. 4 (1JCH=163Hz, C-1B), 86. 4 (1JCH=167Hz, C-1A) , 78. 5 (C-4A) , 78. 4 (C-4B) , 76. 1 (C-3B) , 74. 4 (C-3A), 74. 35 (C-2A), 72. 4 (CH2Ph), 72. 3 (CH2Ph), 69. 4 (C-2B), 68. 5 (C-6B), 68. 25 (C-6A), 66. 8 (C-5B), 65. 2 (C- 5A). Spectre de masse : m/z 808 (M+NH4)+. Analyse pour C46H46010S (790.93) : calculée C :69.85 H :5.86 trouvée C :69.76 6) Phényl [2-0-(3-0-benzyl-4,6-0-benzylidène-2- O-tertbutyldiméthylsilyl-(i-D-mannopyranosyl)-3-0-benzyl- 4,6-0-benzylidène a-D-mannopyranosyl] sulfoxyde (7). 3. 0 g (3.31mmol, 1 éq) de 5 sont dissous dans 40 mL de dichlorométhane anhydre. Après avoir refroidi le milieu reactionnel à -78 C, 0. 97 g (5.5 mmol, 1. 7 éq) d'acide 3-chloroperoxybenzoïque à 85 % préalablement dissous dans 15mL de dichlorométhane sont ajoutés à l'aide d'une canule. Après 15 mn d'agitation à -78 C, la température est laissée remonter à -30 C et quelques gouttes de diméthylsulfure sont additionnées. La phase organique est alors lavée par une solution d'hydrogénocarbonate de sodium, une solution aqueuse de NaCl, séchée (MgS04), filtrée et évaporée sous vide. Une chromatographie sur gel de silice (élution :cyclohexane/acétate d'éthyle=4/1, puis 3/1) du brut donne 2.8 g (91%) d'un premier diastéréomére 7 sous forme d'une mousse blanche et 71 mg (2%) d'un deuxième diastéréomère sous forme également d'une mousse blanche. Caractéristiques du diastéréomère majoritaire pf : 89-91 C(hexane) ; [[alpha]]D -99 (c 1, chloroforme) 1H-R.M.N. (400MHz, CDC13) : # 7.65-7.4m( 25H, arom.),5.63 et 5.62 (2s, 2H, by), 4.89 (1d, 1H, J gem=12Hz, CHPh), 4.85 (d, 1H, J gem=12.4Hz, CHPh), 4.81 (dd, 1H, J 2-1=1.lHz et J 2-3=3.4Hz, H-2A), 4. 78 (d, 1H, J gem=12. 4Hz, CHPh), 4. 76 (1d, 1H, J gem=12Hz, CHPh), 4. 42 (d, 1H, J 1 - 2 = 1 . lHz, H-1A), 4.37 (t, 1H, J 4-3= J 4- 5=10.lHz, H-4A), 4. 33 (dd, 1H, J 3-2=3.4Hz et J 3-4=10.1Hz, H-3A), 4. 28 (dd, 1H, J 6b-6a=10.2Hz et J 6b-5=4.8Hz, H- 6Ab), 4. 26 (se, 1H, H-1B), 4. 18-4.10 (m, 3H, H-5A, H-6Bb et H-4B), 4. 08 (de, 1H, J 2-3=2.8Hz, H-2B), 3. 75 (t, 1H, J 6a- 6b=J 6a-5=10.1Hz, H-6Aa), 3. 74 (dd, 1H, J 6b-6a=J 6b- 5=10.2Hz, H-6Ba), 3. 52 (dd, 1H, J 3-2=2.8Hz et J 3-4=9.7Hz, H-3B), 3. 18 (dt, 1H, J 5-4=J 5-6a=9. 8Hz et J 5-6=4.8Hz, H- 5B), 1 (s, 9H, SiC (CH3)3), et 0. 17 (2s, 6H, Si(CH3)2). 13C R. M.N. (100 MHz) : # 141. 3, 138. 4, 138. 3, 137. 5, 137 (5 C arom. ), 131. 8-124.3 (25 CH arom), 101. 7 (CH by), 101. 4 (CH by), 99. 8 (1JCH=156Hz, C-1B), 97. 5 (1JCH=163Hz, C-1A), 78. 7 (C-4B) , 77. 5 (C-3B) , 77.1 (C-4A), 74. 2 (C-3A), 72. 4 (CH2Ph), 71. 7 (C-2B), 71. 4 (C-2A), 70. 9 (CH2Ph), 70. 1 (C-5A), 68. 4 (C-6B), 68. 1 (C-6A), 67. 5 (C- 5B), 26 (C(CH3)3), 18. 5 (C(CH3)3), -4 (SiCH3), -4. 5 (SiCH3) . Analyse pour C46H46010S (921.198) : calculée C :67.8 H:6.56 trouvée C:67.68 H:6.90 7) Phényl 2-0-(2-0-(2-0-(3-0-benzyl-4,6-0benzylidène-2-0-tertbutyldiméthyl silyl--D-mannopyranosyl) -3-0-benzyl-4,6-O-benzylidène--D-mannopyranosyl)-3-O- benzyl-4,6-0-benzylidène-S-D-mannopyranosyl)-3-0-benzyl- 4,6-0-benzylidène-1-thio-a-D-mannopyranoside (8). Le protocole expérimental est le même que celui de la synthèse du disaccharide 5. On obtient à partir de 6 (1. 140g, 2éq) et 7 (0. 664g, léq) le composé 8 (580 mg, 55%) d'une mousse blanche après une chromatographie sur gel de silice (élution:cyclohexane/acétate d'éthyle=85/15). pf : 111-114 C (hexane); [a]D -53. 5 (c 0. 6, chloroforme) 1H-R.M.N. (400MHz, CDC13) : # 7.5-7.15m( 45H, arom.),5.615*2, 5. 61 et 5. 6 (4s, 4H, by), 5. 53 (d, 1H, J 1-2=1.1Hz, H-1A), 5. 35 (se, 1H, H-lB), 5. 03 (se, 1H, H-1C), 4. 82 (d, 1H, J gem=12.8Hz, CHPh), 4. 76 (s, 2H, CH2Ph), 4. 73 (d, 1H, J gem=12.8Hz, CHPh), 4. 72 (se, 1H, H-1D), 4. 72 (d, 1H, J gem=11.6Hz, CHPh), 4. 67 (d, 1H, J gem=17.7Hz, CHPh), 4. 57 (d, 1H, J gem=11.6Hz, CHPh), 4. 58-4.57 (m, 1H, H-2A), 4.57 (de, 1H, J 2-3=3.2Hz, H-2B), 4.57 (2de, 2H, J 2- 3=3.2Hz, H-2C et H-2D), 4. 42-4.37 (m, 1H, H-5A), 4. 39-4.35 (m, 2H, H-6Db et H-6Bb), 4. 38 (d, 1H, J gem=11.7Hz, CHPh), 4. 29 (dd, 1H, J 6b-6a=10. 2 et J 6b-5=4.8Hz, H-6Ab), 4. 24 (dd, 1H, J 4-3=10 et J 4-5=9.6Hz, H-4B), 4. 16 (t, 1H, J 4- 3=J 4-5=9.7Hz, H-4C), 4. 13 (dd, 1H, J 6b-6a=10.2 et J 6b- 5=4.7Hz, H-6Cb), 4. 05 (t, 1H, J 4-3=J 4-5=lOHz, H-4A), 4. 02 (t, 1H, J 4-3=J 4-5=10Hz, H-4D), 4.05-4.02 (m, 1H, H-3A), 4 (t, 1H, J 6a-6b=J 6a-5=10.3Hz, H-6Ba), 3.89 (t, 1H, J 6a- 6b=J 6a-5=10.2Hz, H-6Da), 3. 8 (t, 1H, J 6a-6b=J 6a- 5=10.2Hz, H-6Aa), 3. 79 (t, 1H, J 6a-6b=J 6a-5=10. 2Hz, H- 6Ca), 3. 69 (dd, 1H, J 3-2=3.2Hz et J 3-4=9.9Hz, H-3D), 3. 58 (dd, 1H, J 3-2=2.7Hz et J 3-4=9.7Hz, H-3C), 3. 55 (dd, 1H, J 3-2=3.2Hz et J 3-4=lOHz, H-3B), 3. 49 (ddd, 1H, J 5-4=9.6Hz et J 5-6b=10. 3Hz et J 5-6a=4. 8Hz, H-5B), 3. 42 (ddd, 1H, J 5-4=9.8Hz et J 5-6b=4.8Hz et J 5-6a=10.2Hz, H-5D), 3. 31 (ddd, 1H, J 5-4=9.7Hz et J 5-6b=4. 75Hz et J 5-6a=10.lHz, H- 5D), 0. 95 (s, 9H, SiC (CH3)3), et 0. 14 (2s, 6H, Si(CH3)2). 13C R. M.N. (100 MHz) : # 138. 6, 138. 4, 138. 1, 138,137.7, 137. 4, 136. 95, 136. 93, 133. 2 (9 C arom.), 131. 65-126 (45 CH arom), 103. 1 (1JCH=159Hz, C-1C), 102. 05 (CH by), 102. 02 (CH by), 101. 6 (CH by), 101. 2 (CH by), 101.19 (1JcH=158.5Hz, C-1B), 99 (lJcH=167Hz, C-1A), 85.4 (lJcH=159.2Hz, C-1D), 79. 7 (C-3C), 79. 05 (C-4C), 78. 9 (C- 4A), 78. 5 (C-4D), 77. 6 (C-4B), 76. 9 (C-3B), 75. 8 (C-3D), 75. 3 (C-2B), 75. 2 (C-2A), 74. 4 (C-3A), 73. 1 (C-2C ou C-2D), 72. 8 (CH2Ph), 71. 9 (CH2Ph), 71. 2 (C-2C ou C-2D), 70. 9 (CH2Ph), 70. 1 (CH2Ph), 68. 8 (C-6A), 68. 7 (C-6D et C-6B), 68. 5 (C-6C), 68.1 (C-5B), 67. 8 (C-5C), 67. 7 (C-5D), 65. 1 (C-5A), 26.1 (C(CH3)3), 18.5 (C(CH3)3), -3.7 (SiCH3), -4.7 ( SiCH3 ) . Spectre de masse : m/z 1602 (M+NH4)+. Analyse pour C92Hioo02oSSi (1585.956) : calculée C:69.67 H:6.35 trouvée C:69.57 H:6.41 8) 8-méthoxycarbonyloctyl 2-0-(2-0-(2-0-(3-0benzyl-4,6-0-benzylidène-2-0-tertbutyldiméthyl silyl-ss-D- mannopyranosyl)-3-0-benzyl-4,6-0-benzylidène-a-Dmannopyranosyl)-3-0-benzyl-4,6-0-benzylidène-a-D- mannopyranosyl)-3-0-benzyl-4,6-0-benzylidène-D- mannopyranoside (10). 562 mg (354 mol, 1 éq) de 8, 166 mg (885 mol, 2. 5 éq) du méthoxycarbonyloctan-1-ol (préparé selon H. Gerlach, P. Künzler, K. Oertle, Helv Chim. Acta, 61 (1978), 1226-1231. ) et 700 mg de tamis moléculaire 4 en poudre sont mis en suspension dans 10 mL de dichlorométhane anhydre. Le tout est mis sous atmosphère d'argon et agité durant 30mn. La solution est refroidie à -20 C et 126 mg (709 mol, 2 éq) de N-bromosuccinimide ainsi que 6.3 L (7.08 mol, 0. 2 éq) d'acide trifluorométhanesulfonique y sont ajoutés. Après 1 heure à -20 C, une solution d'hydrogénocarbonate de sodium est additionnée. Le tout est filtré sur un lit de célite. La phase organique est lavée par une solution de thiosulfate de sodium et par une solution aqueuse de NaCl. Celle-ci est ensuite séchée sur sulfate de magnésium, filtrée et évaporée sous vide. Le brut est chromatographié sur gel de silice (élution:cyclohexane/acétate d'éthyle=3.5/1) et fournit 412 mg (70%) du composé 10 ([alpha]/ss=1/6) non séparables sous la forme d'une mousse blanche. 1H-R.M.N. (400MHz, CDC13) du produit ss-O- connecteur : 8 7.48-7.16n, 40H, arom. ) , 5 . 64, 5. 62 et 5. 6, 5. 34 (4s, 4H, by) , 5. 34 (s, 1H, H-1A) , 5.16 (s, 1H, H-lB) , 4.86 (d, 1H, J gem=12.3Hz, CHPh), 4.84 (s, 1H, H-1C), 4.82 (d, 1H, J gem=12Hz, CHPh), 4. 79 (d, 1H, J gem=12.4Hz, CHPh), 4.74 (d, 1H, J 2-3=3.2Hz, H-2C), 4.73 (d, 1H, J gem=12Hz, CHPh), 4.68 (d, 1H, J gem=12.3Hz, CHPh), 4.67 (d, 1H, J gem=11.8Hz, CHPh), 4.65 (d, 1H, J 2-3=3.4Hz, H-2A), 4. 63 (d, 1H, J gem=12.4Hz, CHPh), 4. 56 (d, 1H, J gem=11.8Hz, CHPh), 4.51 (d, 1H, J 2-3=3.2Hz, H-2B), 4. 47 (s, 1H, H-1D), 4.41 (dd, 1H, J 6b-6a=10.4Hz et J 6b- 5=4.8Hz, H-6Cb), 4. 36 (dd, 1H, J 6b-6a=10. 3Hz et J 6b- 5=4.8Hz, H-6Ab), 4. 32 (dd, 1H, J 6b-6a=10.3Hz et J 6b- 5=4.5Hz, H-6Db), 4. 28 (t, 1H, J 4-3=J 4-5=9.6Hz, H-4A), 4. 23 (dd, 1H, J 6b-6a=10.4Hz et J 6b-5=4.6Hz, H-6Bb), 4. 21 (d, 1H, J 2-3=3.15Hz, H-2D), 4.17 (t, 1H, J 4-3=J 4- 5=9.3Hz, H-4B), 4. 01 (t, 1H, J 6a-6b=J 6a-5=10.3Hz, H-6Aa), 3.99 (t, 1H, J 4-3=J 4-5=9.5Hz, H-4C) , 3. 91 (t, 1H, J 6a- 6b=J 6a-5=10.4Hz, H-6Ca), 3. 95-3.88 (m, 1H, -0-CH-CH2-), 3. 88 (t, 1H, J 4-3=J 4-5=9.8Hz, H-4D), 3. 85 (t, 1H, J 6a- 6b=J 6a-5=10.4Hz, H-6Ba), 3.69 (s, 3H, -C:0-OCH3), 3.64 (dd, 1H, J 3-2=3.2Hz et J 3-4=9.5Hz, H-3C), 3. 6 (dd, 1H, J 3-2=3.4Hz et J 3-4=9.6Hz, H-3A), 3. 59 (dd, 1H, J 3-2=3.15Hz et J 3-4=9. 8Hz, H-3D), 3.60-3.57 (m, 1H, H-6Da) , 3.54 (dd, 1H, J 3-2=3.2Hz et J 3-4=9.3Hz, H-3B), 3. 5-3.27 (m, 5H, H- 5A, H-5B, H-5C, H-5D et -0-CH-CH2-), 2. 31 (t, 2H, J 3- 2=7.5Hz, -CH2C:0-OCH3),1.64-1.58, 1. 34-1.31 (m, 12H,-CH2- ), 0.94 (s, 9H, SiC(CH3)3), 0. 25 et 0. 14 (2s, 6H, Si(CH3)2). 13C R. M.N. (100 MHz) : 8 138.5, 138. 4, 138. 39, 138. 2, 137. 7, 137. 5, 137. 1, 137. 08 (8 C arom.), 129-126 (40 CH arom), 103.9 (159.7C-1C), 102. 7 (1JCH=160Hz, C-1D), 101. 8 (CH by), 101. 6 (CH by), 101. 58 (1JCH=155Hz, C-1A), 101. 5 (CH by) , 101.35 (1JCH=158.5Hz, C-1B) , 101. 2 (CH by) , 79. 9 (C-3B) , 78. 97 (C-4B) , 78. 46 (C-4D) , 78. 4 (C-4C) , 77. 9 (C-4A), 77.6 (C-2D), 76.29 (C-3D), 76.27 (C-3C), 76.23 (C- 3A), 75. 22 (C-2A), 72. 83 (C-2C), 72. 8 (CH2Ph), 71. 9 (CH2Ph), 71. 16 (C-2B), 70. 62 (CH2Ph), 70. 14 (-0-CH2-), 69. 8 (CH2Ph), 68.87, 68. 82*2, 68.5 (C-6A, C-6B, C-6C et C-6D), 67. 88 (C-5B), 67. 83 (C-5C), 67. 7 (C-5A), 67. 4 (C-5D), 34 (CH2-C:0-0-CH3), 29. 5, 29. 2, 29. 1, 29,25.5, 24. 8 (-CH2-), 25. 9 (C(CH3)3), 18. 5 (C(CH3)3), -3. 7 (SiCH3),-4.7 (SiCH3). Spectre de masse : m/z 1663. 7 (M+H)+. Analyse pour C96H114O23Si (1664.03) : calculée C :69.29 H :6.905 trouvée C :69.13 H:7.069) 8-carboxyloctyl 2-O-(2-O-(2-O-(ss-D- mannopyranosyl ) -3-D-mannopyranosyl) -3-D-mannopyranosyl) -D- mannopyranoside (I, R=connecteur). - Etape 1: désilylation 305 mg (183 mol, 1 éq) du composé 10 et 405 mg (1.28 mmol, 7 éq) de fluorure de tetrabutylammonium trihydrate sont mis en solution dans 10 mL de tetrahydrofurane. Après 12 heures de chauffage à 60 C, le milieu reactionnel est dilué par du dichlorométhane et lavé par de l'eau. La phase organique est séchée sur sulfate de magnésium, filtrée et évaporée sous pression réduite. La chromatographie du brut sur gel de silice (élution:cyclohexane/acétate d'éthyle=2/1) fournit 230 mg (80%) du produit désilylé sous la forme d'une mousse blanche. Etape 2 : saponification 140 mg (85 mol) du produit précédent sont dissous dans 5 mL de tetrahydrofurane. A cela sont ajoutés 4.5 mL (0.1N) d'hydroxyde de sodium. Le tout est chauffé à 60 C durant une nuit. La solution est alors acidifiée par une solution d'acide chlorhydrique (1M) et extraite 3 fois par du dichlorométhane. La phase organique est séchée sur MgS04, filtrée et évaporée sous vide. La chromatographie du brut sur gel de silice (élution :dichlorométhane / méthanol=50/1) fournit 115 mg (82%) du produit sous la forme d'une mousse blanche. Etape 3 : hydrogénolyse 66mg (42 mol) du produit précédent sont dissous dans 2 mL de méthanol et agités sous atmosphère de dihydrogène (1.4bar) en présence de Pd/C (10 %) en quantité catalytique pour donner (I, R=connecteur) (29. 3 mg, 83%), après lyophilisation, sous forme d'une poudre blanche amorphe.(mélange [alpha]/ss 1/6 au niveau de l'aglycone) 1H-R.M.N. (400MHz, D20) du produit ss-Oconnecteur : 84.99 (se, 1H, H-1A), 4. 89 (se, 1H, H-lB), 4. 84 (se, 1H, H-1C), 4. 68 (se, 1H, H-1D), 4. 36 (d, 1H, J 2- 3=3Hz, H-2A), 4. 28 (d, 1H, J 2-3=3.2Hz, H-2C), 4. 18 (d, 1H, J 2-3=3.19Hz, H-2D), 4. 11 (d, 1H, J 2-3=3. 2Hz, H-2B), 3. 9- 3.84 (m, 5H, H-6Ab, H-6Bb, H-6Cb, H-6Db et -0-CH-CH2), 3. 73-3.65 (m, 4H, H-6Aa, H-6Ba, H-6Ca, H-6Da), 3. 63 (dd, 1H, J 3-2=3.19Hz et J 3-4=9.7Hz, H-3D), 3. 62-3.57 (m, 2H, - 0-CH-CH2 et H-3C), 3. 59 (dd, 1H, J 3-2=3Hz et J 3-4=10.3Hz, H-3A), 3. 57 (dd, 1H, J 3-2=3.2Hz et J 3-4=9.7Hz, H-3B), 3. 55 (t, 1H, J 4-3=J 4-5=10.3Hz, H-4A), 3. 51 (t, 1H, J 4- 3=J 4-5=9.7Hz, H-4B), 3. 46 (t, 1H, J 4-3=J 4-5=9.7Hz, H- 4C), 3. 44 (t, 1H, J 4-3=J 4-5=9.7Hz, H-4D), 3. 36-3.3 (m, 4H, H-5A, H-5B, H-5C et H-5D), 2. 25 (t, 2H, J CH2- CH2=7. 4Hz, -CH2-COOH), 1. 6-1.52 et 1. 3-1.28 (m, 12H,-CH2- ) . 13C R. M.N. (100 MHz) : 8 181.7 (COOH), 101. 58, 101. 46, 101. 26, 100. 32 (C-1A, C-1B, C-1C, C-1D), 79. 5, 79. 3, 78. 7, 76. 6, 76. 5*3, 73. 2, 72. 6, 72. 3*2, 70. 7, 67. 8, 67. 4, 67. 2, 67. 1, 61. 5, 61. 06, 61. 02, 60. 9 (20 CH cycle), 70. 4 (-O-CH2-), 34 (-CH2-C02H), 29,28.7, 28. 65, 28. 6, 25. 7, 25. 5 (6 -CH2-). Spectre de masse (FAB) m/z calculé C33H58O23Na : 845. 32. Trouvé 845.24 10) 2-0-(2-0-(2-0-(3-0-benzyl-4,6-0-benzylidène --D-mannopyranosyl)-3-0-benzyl-4,6-0-benzylidène-a-D-manno pyranosyl)-3-0-benzyl-4,6-0-benzylidène-a-D-mannopyranosyl) -3-0-benzyl-4,6-0-benzylidène-D-mannopyranose (9). Etape 1 : Pour le protocole expérimental, voir l'étape 1 du composé I (R=connecteur). 8 (235 mg) traité par le fluorure de tetrabutylammonium donne du phényl 2-0-(2-0-(2-0-(3-0- benzyl-4,6-0-benzylidène -D-mannopyranosyl)-3-0-benzyl- 4,6-0-benzylidène-p-D-mannopyranosyl)-3-0-benzyl-4,6-0benzylidène--D-mannopyranosyl)-3-0-benzyl-4,6-0- benzylidène-1-thio-a-D-mannopyranoside (202 mg, 92%) sous la forme d'une mousse blanche, après une chromatographie sur gel de silice (élution:cyclohexane/acétate d'éthyle=2.5/1) et après une recristallisation dans du méthanol. pf : 133-136 C(méthanol); [[alpha]]D -42 (c 0.5, chloroforme) 1H-R.M.N. (400MHz, CDC13) . # 7.57-7.32m(, 45H, arom.),5.73, 5. 71, 5. 67 et 5. 66 (4s, 4H, by) , 5. 64 (s, 1H, H-lA), 5. 36 (s, 1H, H-1B), 4. 92 (s, 1H, H-1D), 4. 86 (d, 1H, J gem=12.1Hz, CHPh), 4. 83 (d, 1H, J gem=11.8Hz, CHPh), 4. 79 (s, 1H, H-1C) , 4. 78 (s, 2H, CH2Ph) , 4. 77 (2d, 2H, 2CHPh) , 4. 71 (d, 1H, J 2-3=3.2Hz, H-2A), 4.69 (d, 1H, J gem=11.8Hz, CHPh), 4. 64 (d, 1H, J gem=11.8Hz, CHPh), 4. 61 (d, 1H, J 2- 3=3Hz, H-2B), 4. 53 (d, 1H, J 2-3=3.4Hz, H-2C), 4. 51-4.46 (m, 1H, H-5A), 4. 47 (dd, 1H, J 6b-6a=10. 3Hz et J 6b- 5=4.8Hz, H-6Bb), 4. 41-4.36 (m, 4H, H-6Ab, H-6Cb, H-6Db, H- 2D), 4. 36 (t, 1H, J 4-3=J 4-5=9.7Hz, H-4D), 4. 32 (t, 1H, J 4-3=J 4-5=9.8Hz, H-4B) , 4. 21 (t, 1H, J 4-3=J 4-5=9.7Hz, H- 4C), 4.13-4.11 (m, 2H, H-4A et H-3A), 4.08 (t, 1H, J 6a- 6b=J 6a-5=10Hz, H-6Ba), 3. 98 (dd, 1H, J 6a-6b=10. 4 et J 6a- 5=9.7Hz, H-6Ca), 3. 95 (dd, 1H, J 6a-6b=10.lJ 6a-5=9.7Hz, H- 6Da), 3. 91 (t, 1H, J 6a-6b=J 6a-5=10.2Hz, H-6Aa), 3. 75 (dd, 1H, J 3-2=3.4Hz et J 3-4=9.7Hz, H-3C) , 3 . 65 (dd, 1H, J 3- 2=3Hz et J 3-4=9.8Hz, H-3B), 3. 56 (ddd, 1H, J 5-4=9.8Hz et J 5-6b=4.8Hz et J 5-6a=9.8Hz, H-5B), 3.53 (dd, 1H, J 3- 2=3.lHz et J 3-4=9.6Hz, H-3D), 3. 44 (ddd, 1H, J 5-4=9.7Hz et J 5-6b=9.7Hz et J 5-6a=4.7Hz, H-5C), 3. 35 (ddd, 1H, J 5- 4=9.7Hz et J 5-6b=9.7Hz et J 5-6a=4. 9Hz, H-5D), 3. 28 (se, 1H, OH). 13C R. M.N. (100 MHz) : # 138.2*2, 137. 9, 137. 8, 137. 5, 137. 2, 137. 04, 136. 8, 133. 05 (9 C arom.), 131. 5- 125. 9 (45 CH arom), 102. 1 (CH by), 101. 5 (CH by), 101. 48 (C-1D), 101. 26 (CH by), 101. 15 (CH by), 101 (C-1B), 98.2 (C-1C) , 85.14(C-1A), 78.98 (C-4A) , 78.4 (C-4D) , 78 (C-4B) , 77.98 (C-4C), 77. 7 (C-3B), 76.9 (C-3D), 75.3 (C-3C), 74.6 (C-3A), 74. 4 (C-2A), 74. 3 (C-2C), 74.1 (C-2B), 72. 4 (CH2Ph) , 71. 8*2 (CH2Ph) , 71 (CH2Ph) , 68. 9 (C-2D) , 68.6 (C- 6D), 68. 5 (C-6A), 68. 4 (C-6B), 68. 25 (C-6C), 67. 8 (C-5B et C-5C), 66. 8 (C-5D), 64. 9 (C-5A). Spectre de masse : m/z 1488 (M+NH4)+. Analyse pour C86H86O20S. 1CH3OH (1503.67) : calculée C:69.49 H:6.03 trouvée C:69.28 H:5.92 Etape 2 : hydrolyse du thiophényl 175 mg (119 mol, 1 éq) du composé précédent sont dissous dans un mélange de solvants acétone/eau=4.5mL/0.5mL. Le tout est refroidi à 0 C. A cela sont ajoutés 106 mg (0.595 mmol, 5 éq) de Nbromosuccinimide. Une solution d'hydrogénocarbonate de sodium est versée dans le ballon après 30 mn d'agitation à 0 C. L'acétone est alors évaporée sous vide. Le résidu est repris par du dichlorométhane, lavé par une solution de thiosulfate de sodium et par une solution aqueuse de NaCl. La phase organique est ensuite séchée sur sulfate de magnésium, filtrée et évaporée. Le brut est chromatographié sur gel de silice (élution:cyclohexane/acétate d'éthyle=1.8/1 puis 1. 5/1) et donne 138 mg (Rdt=84%) du composé 9 d'un mélange de configuration [alpha]/ss (2. 6/1) sous forme d'une mousse blanche. 1H-R.M.N. (400MHz, CDC13) du produit a-OH: #5.52 (s, 1H, H-1B) , 5.22 (de, 1H, J 1-OH=3Hz, H-lA) , 4.78 (s, 1H, H-1D), 4. 63 (s, 1H, H-1C). 13C R. M.N. (100 MHz) : 8 101.7 (C-1D), 101.1 (C-1B), 99. 2 (C-1C), 92. 09 (C-1A) et disparition du pic caractéristique à 85. 14 ppm de C-1A possédant un thiophénol en tant qu'aglycone. Spectre de masse : m/z 1396. 8 (M+NH4)+. Analyse pour C80H82O21 (1379.529) : calculée C :69.65 H :5.99 trouvée C :69.46 H:6.1111) 2 - 0 - ( 2 - 0 - (2-0- (P-D-mannopyranosyl) -ss-D- mannopyranosyl)-o-D-mannopyranosyl)-D-mannopyranose (I, R=H). Pour le protocole expérimental, voir l'étape 3 du composé I (R=connecteur). 111. 4 mg (80.7 mol) du composé 9 donne 46 mg (85%) du composé I (R=H) après lyophilisation sous forme d'une poudre amorphe. 1H-R.M.N. (400MHz, D20) du produit a-OH . 85.24 (d, 1H, J 1-2=1.64Hz, H-1A), 4. 91 (s, 1H, H-1C), 4. 89 (s, 1H, H-1D) , 4. 81 (se, 1H, H-1B), 4. 39 (d, 1H, J 2-3=3.2Hz, H-2C), 4.22 (d, 1H, J 2-3=3.27Hz, H-2B), 4.11 (d, 1H, J 2- 3=3.lHz, H-2D), 4. 08 (dd, 1H, J 2-1=1.64Hz et J 2-3=3.02Hz, H-2A). 13C R. M.N. (100 MHz) : 8 101.53, 101. 29, 99. 46, 92. 4 (C-1A, C-1B, C-1C, C-1D), 79. 7, 79,78.7, 76. 6, 76. 5, 76. 4, 73. 2, 72. 67, 72. 5, 72. 2, 70. 7, 69. 4, 67. 7, 67. 4, 67. 26, 67. 1, 61. 5, 61. 1, 60. 84, 60. 7 (20 CH cycle). Spectre de masse (FAB) m/z : calculée C24H42021Na . 689. 21 obtenue : 689. 32 Exemple 2 : Préparation de D-Man [alpha](1-2) D-Man [alpha](1-2) D-Man a(1-2) D-Man, de formule (II). I - Schéma réactionnel. La figure 2 en annexe représente le schéma réactionnel de la préparation de D-Man [alpha](1-2) D-Man a(1-2) D-Man a(l-2) D-Man de formule (II). Comme dans l'exemple 1 une stratégie par bloc a été utilisée. Un groupe thiophényl protège intermédiairement le carbone anomère. Le composé 11 conduit selon la réaction mise en #uvre aux composés 12 ou 13, lesquels sont condensés en le disaccharide 14. La réaction (a') est réalisée dans les conditions suivantes : CH3COOH, H20 (80/20) puis CC13CN, DBU, CH2Cl2, 0 C. La réaction (b') est réalisée dans les conditions suivantes : PhSH, HgBr2, CH3CN, 80 C puis CH3ONa, CH30H. La réaction (c') est réalisée dans les conditions suivantes : TMSOTf, tamis moléculaire 4 Angstrom, CH2C12. Le disaccharide 14 est transformé en disaccharides 15 et 16 lesquels sont condensés pour obtenir le tetrasaccharide clé 17. La réaction (d') est réalisée dans les conditions suivantes : NBS, eau, acétone, puis CC13CN, DBU, CH2C12. La réaction (e') est réalisée dans les conditions suivantes : MeONa, MeOH. La réaction (f') est réalisée dans les conditions suivantes : 1) BF3. Et20, tamis moléculaire 4 Angstrom, CH2C12 ; 2) MeONa/MeOH. Le tetrasaccharide clé 17 peut être ou non fonctionalisé en l'un des composés 18 ou 19 et donne après déprotection le tétramannoside de formule (II) dans laquelle R est H ou -(CH2)8-CO2Me. La réaction (g') est réalisée dans les conditions suivantes : NBS, TfOH, 8-methoxycarbonyloctanol, tamis moléculaire 4 Angstrom, CH2C12, -15 C. La réaction (h') est réalisée dans les conditions suivantes : NBS, eau, acétone. La réaction (i') est réalisée dans les conditions suivantes : 1- NaOH, THF, eau, 2-H2, Pd/C, MeOH. La réaction (j') est réalisée dans les conditions suivantes : H2, Pd/C, MeOH. II - Protocole expérimental. Les composés 12 (F Yamazaki, S Sato, T Nukuda, Y. Ito, T Ogawa, Carbohydr. Res. 201 (1990) 31-50) et 13 (Y-M. Zhang, J. -M. Mallet, P. Sina.Carbohydr. Res. 236, (1992), 73-88. ) sont préparés selon la littérature à partir de l'orthoester 11 (N. E. Franks R Montgomery, Carbohydr. Res. 6 (1968) 286-98) 1) Phényl 2-0-(2-0-acétyl-3,4,6-tri-0-benzyl-a- D-mannopyranosyl)-3,4,6-tri-O-benzyl-1-thio-a-D- mannopyranoside (14). Un mélange de 12 (F Yamazaki, S Sato, T Nukuda, Y. Ito, T Ogawa, Carbohydr. Res. 201 (1990) 31-50) (9. 7 g, 15. 24 mmol, 1. 2 éq), 13 (Y-M. Zhang, J.-M. Mallet, P. Sina.Carbohydr. Res. 236, (1992), 73-88) (6. 88 g, 12.7 mmol, 1 éq) et 17 g de tamis moléculaire 4 en poudre dans 100 mL de dichlorométhane anhydre est agité sous atmosphère d'argon. Après 30 mn d'agitation, le milieu reactionnel est refroidi à -10 C. Du trifluorométhanesulfonate de triméthylsilyle (0. 44 mL, 1.9 mmol, 0. 15 éq) sont alors additionnés. 30mn plus tard, la solution est neutralisée par une solution aqueuse d'hydrogénocarbonate de sodium. La phase organique est ensuite lavée par une solution de saumure, séchée sur sulfate de magnésium, filtrée et concentrée. La chromatographie du brut sur gel de silice (élution:cyclohexane/acétate d'éthyle=6/1) fournit 14 (9. 3 g, 72%) sous la forme d'une sirop incolore. [a]D +93 (c 0. 55, chloroforme) 1H-R.M.N. (400MHz, CDCI3) : # 7.48-7.25m(, 35H, arom. ),5.69 (d, 1H, J 1-2=1.62Hz, H-1A), 5. 58 (dd, 1H, J 2-1=1.7Hz et J 2-3=3.3Hz, H-2B), 5. 13 (d, 1H, J 1-2=1.7Hz, H-1B), 4. 94 (d, 1H, J gem=10.8Hz, CHPh), 4. 87 (d, 1H, J gem=10. 8Hz, CHPh), 4. 79 (d, 1H, J gem=11.8Hz, CHPh), 4. 75 (d, 1H, J gem=11.8Hz, CHPh), 4. 71 (d, 1H, J gem=10.9Hz, CHPh), 4. 69 (d, 1H, J gem=12Hz, CHPh), 4. 64 (d, 1H, J gem=10.8Hz, CHPh), 4. 6 (d, 1H, J gem=12.3Hz, CHPh), 4. 52 (d, 1H, J gem=12Hz, CHPh), 4. 47 (d, 1H, J gem=10.8Hz, CHPh), 4. 45 (d, 1H, J gem=10.9Hz, CHPh), 4. 43 (d, 1H, J gem=12.3Hz, CHPh), 4. 33 (ddd, 1H,- J 5-4=9.3Hz, J 5-6a=1.7Hz et J 5-6b=5.2Hz, H-5A), 4. 28 (dd, 1H, J 2-1=1.62Hz et J 2- 3=2.8Hz, H-2A), 4.03 (dd, 1H, J 3-2=3.3Hz et J 3-4=9.4Hz, H-3B), 4. 03-3.97 (m, 1H, H-5B), 3. 99 (t, 1H, J 4-3=J 4- 5=9.3Hz, H-4A), 3.94 (dd, 1H, J 3-2=2.8Hz et J 3-4=9.3Hz, H-3A), 3. 88 (t, 1H, J 4-3=J 4-5=9.4Hz, H-4B), 3. 88 (dd, 1H, J 6b-6a=ll.lHz et J 6b-5=5.2Hz, H-6Ab), 3. 77 (dd, 1H, J 6b- 6a=ll.lHz et J 6b-5=1.7Hz, H-6Aa), 3. 74 (dd, 1H, J 6b- 6a=10. 6Hz et J 6b-5=4.5Hz, H-6Bb), 3. 77 (dd, 1H, J 6b- 6a=10. 6Hz et J 6b-5=1.7Hz, H-6Ba), 2. 19 (s, 3H, -C:0-OCH3). 13C R.M.N. (100 MHz) : 8 170.2 (-C:0-OCH3), 138. 4, 138. 3, 138. 27, 138,137.98, 137. 9, 131. 6 (7 C arom.), 129-127.3 (35 CH arom), 99.7 (1JCH=169.2Hz, C-1B), 87.1 (1JCH=168.8Hz, C-1A), 79.89 (C-3A), 78 (C-3B), 76.6 (C-2A), 75. 2 (CH2Ph), 75 (CH2Ph), 74. 7 (C-4A), 74. 3 (C-4B), 73.1 (2 CH2Ph), 72.8 (C-5A), 72.2 (CH2Ph), 71.9 (CH2Ph), 71.9 (C-5B), 69.1 (C-6A), 68. 7 (C-2B), 68.5 (C-6B), 21.1 (- C:0-OCH3). Spectre de masse : m/z 1034.4 (M+NH4)+. Analyse pour C62H64011S (1017.256) : calculée C :73.20 H :6.35 trouvée C :72.98 2) 0-[2-0-(2-0-acétyl-3,4,6-tri-O-benzyl-a-D- H:6.65mannopyranosyl)-3,4,6-tri-O-benzyl-a-D-mannopyranosyl et D-mannopyranosyl] trichloroacétimidate (15). 14 (3 g, 2.95 mmol, 1 éq) est dissous dans 150 mL d'un mélange acétone/eau:95/5. A cette solution sont ajoutés 2. 6 g (11.8 mmol, 4 éq) de N-bromosuccinimide. Après 15 mn d'agitation, une solution d'hydrogénocarbonate de sodium est ajoutée et l'acétone est évaporée sous vide. Le résidu est repris par du dichlorométhane et lavé par une solution de saumure. Une flash chromatographie sur gel de silice du brut fournit 2. 37 g (Rdt=87%) du produit OH libre en position réductrice sous forme d'une huile incolore. Cette huile ainsi obtenue est dissoute dans 10 mL de dichlorométhane anhydre. 3. 08 mL (12 éq) de trichloroacétonitrile sont ajoutés, la solution est refroidie à 0 C et 115 \iL (0. 3 éq) de 1,8-diazabicyclo- [5.4.0]undec-7-ène sont alors additionnés au milieu. Après 20 mn, la solution est injectée directement sur un gel de silice (élution:cyclohexane/acétate d'éthyle=3/1) et 2. 2 g (Rdt=81% sur les deux étapes) du composé 15a très majoritaire ([alpha]/ss=92/8) sont ainsi obtenus sous la forme d'une huile incolore. 1H-R.M.N. (400MHz, CDC13) du produit [alpha]-O- Imidate : 88.55 (s, 1H, C=NH) , 7. 39-7.25 (m, 30H, arom.),6.36 (d, 1H, J 1-2=1.95Hz, H-1A), 5. 67 (dd, 1H, J 2-1=1.6Hz et J 2-3=3.4Hz, H-2B), 5. 2 (d, 1H, J 1-2=1.6Hz, H-1B), 4. 95 (d, 1H, J gem=10.6Hz, CHPh), 4. 89 (d, 1H, J gem=10.8Hz, CHPh), 4. 81 (d, 1H, J gem=11.9Hz, CHPh), 4. 75 (d, 1H, J gem=12Hz, CHPh), 4. 73 (d, 1H, J gem=11.9Hz, CHPh), 4. 71 (d, 1H, J gem=10.8Hz, CHPh), 4. 7 (d, 1H, J gem=12.6Hz, CHPh), 4.65 (d, 1H, J gem=10.6Hz, CHPh), 4.55 (d, 1H, J gem=12.6Hz, CHPh), 4. 52 (d, 1H, J gem=12Hz, CHPh), 4. 51 (d, 1H, J gem=10. 8Hz, CHPh), 4. 45 (d, 1H, J gem=10.8Hz, CHPh), 4. 13 (dd, 1H, J 2-1=1.95Hz et J 2-3=3. 3Hz, H-2A), 4. 09 (t, 1H, J 4-3=J 4-5=9.7Hz, H-4A), 4. 08-3.97 (m, 5H, H-5A, H-5B, H-3A, H-3B et H-4B), 3. 89 (dd, 1H, J 6b-6a=11.5Hz et J 6b- 5=3.6Hz, H-6Ab), 3. 86 (dd, 1H, J 6b-6a=11.6Hz et J 6b- 5=4.lHz, H-6Bb), 3. 78 (dd, 1H, J 6b-6a=11.5Hz et J 6b- 5=1.1Hz, H-6Aa), 3. 75 (dd, 1H, J 6b-6a=11.6Hz et J 6b- 5=lHz, H-6Ba), 2. 2 (s, 3H, -C:O-OCH3). 13C R. M.N. (100 MHz) : 8 170. 25 (-C:O-OCH3), 159. 98 (-C=NH), 138. 4, 138. 3, 138. 15, 138. 07, 137. 9, 137.88 (6 C arom.), 128. 4-127.4 (30 CH arom), 99. 5 (C-1B), 96. 7 (C-1A), 78. 5 (C-3A), 78. 1 (C-3B), 75. 4 (CH2Ph), 75. 1 (CH2Ph), 74. 7 (C-5B), 74. 1 (C-4B), 73. 8 (C-4A), 73. 3 (CH2Ph), 73. 2 (CH2Ph), 73 (C-2A), 72. 4 (CH2Ph), 71.97 (CH2Ph), 71.9 (C-5A), 68. 62 (C-2B), 68. 58 (C-6B), 68. 51 (C- 6A), 21. 15 (-C:0-OCH3). Pas d'analyse élémentaire pour ces composés peu stables. 3) Phényl 2-0-(3,4,6-tri-0-benzyl-a-D-manno pyranosyl)-3,4,6-tri-0-benzyl-1-thio-a-D-mannopyranoside (16). 14 (6 g, 5.9mmol) est dissous dans 40 mL d'un mélange toluène /méthanol: 1 / 1. A cela est ajouté du sodium (cat.). Après 15 mn, la solution est neutralisée par de la résine amberlite IR 120 (H+), filtrée et concentrée. Une chromatographie sur gel de silice (élution : cyclohexane / acétate d'éthyle=3/1) du brut fournit 16 (5. 45 g, 95%) sous forme d'un sirop incolore. [[alpha]]D +93. 6 (c 0. 51, chloroforme) 1H-R.M.N. (400MHz, CDC13) : # 7.5-7.2m,( 35H, arom.),5.76 (d, 1H, J 1-2=1.6Hz, H-1A), 5. 22 (d, 1H, J 1- 2=1.6Hz, H-1B), 4. 95 (d, 1H, J gem=10.7Hz, CHPh), 4. 85 (d, 1H, J gem=10.9Hz, CHPh), 4. 77 (s, 2H, CH2Ph), 4. 75 (d, 1H, J gem=12Hz, CHPh), 4.66 (d, 1H, J gem=10.7Hz, CHPh), 4.65 (d, 1H, J gem=11.3Hz, CHPh), 4.6 (d, 1H, J gem=11.3Hz, CHPh), 4. 57 (d, 1H, J gem=12.4Hz, CHPh), 4. 55 (d, 1H, J gem=12Hz, CHPh), 4. 52 (d, 1H, J gem=10.9Hz, CHPh), 4. 45 (d, 1H, J gem=12. 4Hz, CHPh), 4. 37-4.33 (m, 1H, H-5A), 4. 34 (dd, 1H, J 2-1=1.6Hz et J 2-3=2.7Hz, H-2A), 4. 21-4.18 (m, 1H, H- 2B), 4.01 (t, 1H, J 4-3=J 4-5=9.3Hz, H-4A), 4. 03-3.98 (m, 1H, H-5B), 3. 96 (dd, 1H, J 3-2=2.7Hz et J 3-4=9.3Hz, H-3A), 3. 95 (dd, 1H, J 6b-6a=11.2Hz et J 6b-5=4.6Hz, H-6Ab), 3. 93 (dd, 1H, J 3-2=3.lHz et J 3-4=9.4Hz, H-3B), 3. 87 (t, 1H, J 4-3=J 4-5=9.4Hz, H-4B), 3.8 (dd, 1H, J 6b-6a=11.2Hz et J 6b-5=1.6Hz, H-6Aa), 3. 71 (dd, 1H, J 6b-6a=10.6Hz et J 6b- 5=4.9Hz, H-6Bb), 3.64 (dd, 1H, J 6b-6a=10.6Hz et J 6b- 5=1.9Hz, H-6Ba), 2. 53 (d, 1H, J OH-2=1.6Hz, OH). 13C R. M.N. (100 MHz) : 8 138. 5, 138. 3, 138. 2, 138,137.9, 137. 86, 131. 5 (7 C arom.), 128. 9-127.3 (35 CH arom), 101. 2 (C-1B), 87. 2 (C-1A), 79. 99 (C-3A), 79. 9 (C- 3B), 76. 5 (C-2A), 75. 1 (CH2Ph), 75 (CH2Ph), 74. 8 (C-4A), 74. 2 (C-4B), 73. 13 (CH2Ph), 73. 1 (CH2Ph), 72. 8 (C-5A), 72. 3 (CH2Ph), 72. 1 (CH2Ph), 71.6 (C-5B), 69. 1 (C-6A), 68. 5 (C- 6B), 68. 47 (C-2B). Spectre de masse : m/z 992. 6 (M+NH4)+. Analyse pour C6oH62010S (975.218) : calculée C :73.89 H :6.408 trouvée C :74.15 4) Phényl 2-O-(2-0-(2-O-(3,4,6-tri-O-benzyl-aD-mannopyranosyl)-3,4,6-tri-0-benzyl-a-D-mannopyranosyl)- 3,4,6-tri-0-benzyl-a-D-mannopyranosyl)-3,4,6-tri-O-benzyl- 1-thio-a-D-mannopyranoside (17). Un mélange de 16 (200 mg, 187 mol, 1 éq), 15 (364 mg, 374 mol, 2 éq), de 600 mg de tamis moléculaire 4 À dans 6 mL de dichlorométhane anhydre est agité durant 30 mn sous atmosphère d'argon et refroidi à -10 C. Puis 71 L (3 éq) d'éthérate de trifluorure de bore sont additionnés. Après 40 mn à -10 C, l'ensemble est neutralisé par une solution d'hydrogénocarbonate de sodium. Après une filtration sur un lit de célite, la phase organique est lavée par une solution de saumure, séchée sur sulfate de magnésium, filtrée et concentrée sous vide. Le résidu est chromatographié (élution:cyclohexane/acétate d'éthyle=6/1) et fournit 211 mg (Rdt=60%) d'une huile incolore. L'analyse par 1H-R.M.N montre la présence de deux produits, l'un de stéréochimie a au niveau de la liaison nouvellement créée et l'autre ss Ceux-ci sont malheureusement non séparables par chromatographie sur gel de silice. Le mélange est alors dissous dans un mélange toluène/méthanol et du sodium (cat. ) y est ajouté. Après 15 mn, la solution est neutralisée par de la résine amberlite IR 120 (H+), filtrée et évaporée sous vide. Le résidu est chromatographié (élution:cyclohexane/acétate d'éthyle=5/1) et fournit le produit 17 (153 mg, 71%) Caractéristiques de 17[a]D +48.7 (c 0.36, chloroforme) 1H-R.M.N. (400MHz, CDC13) . # 7.51-7.23m(, 60H, arom.),5.83 (d, 1H, J 1-2=1.4Hz, H-1A), 5. 35 (d, 1H, J 1- 2=1.4Hz, H-1B ou H-1C), 5. 3 (d, 1H, J 1-2=1.6Hz, H-1B ou H- 1C), 5. 21 (d, 1H, J 1-2=1.5Hz, H-1D), 4. 91 (d, 1H, J gem=10.7Hz, CHPh), 4.9 (d, 1H, J gem=10.9Hz, CHPh), 4.89 (d, 1H, J gem=10.6Hz, CHPh), 4.84 (d, 1H, J gem=10.8Hz, CHPh), 4. 71 (2d, 2H, J gem=12. 2Hz, 2 CHPh), 4. 69 (d, 1H, J gem=11.3Hz, CHPh), 4.67 (d, 1H, J gem=11.3Hz, CHPh), 4.65 (s, 2H, CH2Ph) , 4.64 (d, 1H, J gem=11.3Hz, CHPh), 4.61 (d, 1H, J gem=10. 9Hz, CHPh), 4. 59 (d, 1H, J gem=12.3Hz, CHPh), 4.56 (3d, 3H, 3 CHPh), 4.54 (d, 1H, J gem=12.2Hz, CHPh), 4. 53 (d, 1H, J gem=11.3Hz, CHPh), 4.51 (d, 1H, J gem=10.8Hz, CHPh), 4. 49 (d, 1H, J gem=11.9Hz, CHPh), 4.47 (d, 1H, J gem=12.2Hz, CHPh), 4.46 (d, 1H, J gem=12.8Hz, CHPh), 4. 36 (d, 1H, J gem=11.9Hz, CHPh), 4. 36-4.34 (m, 2H, H-2A et H-5A, B, C ou D), 4. 24 (d, 1H, J gem=12.3Hz, CHPh), 4.21 (m, 1H, H-2D), 4.19 (dd, 1H, J 2-1=1.6Hz et J 2- 3=2.4Hz, H-2B ou H-2C), 4. 17 (dd, 1H, J 2-1=1.4Hz et J 2- 3=2.4Hz, H-2B ou H-2C), 4. 04-3.95 (m, 6H, H-3D, H-3B ou H- 3C, H-4A, B, C ou D, 3*H-5A, B, C u D) , 3 .97-3 .88 (m, 4H, H-3A, H-3B ou H-3C et 2*H-4A, B, C ou D), 3. 83-3.56 (m, 5H, H-4A, B, C ou D, H-6A, H-6B, H-6C et H-6D) , 2.47 (d, 1H, J OH-2=2. 25Hz, OH). 13C R. M.N. (100 MHz) : # 138. 47*2, 138. 44, 138. 4*2, 138. 32*2, 138. 29, 138. 2, 138. 05, 138,137.9, 134. 2 (13 C arom. ), 128. 8-127.2 (60 CH arom), 101. 4 (C-1B ou C- 1C, lJcH=171 . 7Hz ou lJcH=170 . 9Hz ) , 101 (C-1B ou C-1C et C- 1D, iJcH=171. 7Hz ou 1J'ch=170.9Hz) , 87.1 (C-1A, iJcH=169.1Hz), 80,79.6, 79. 4, 79 (4*C-3), 77. 3 (C-2A), 75. 5 (C-2B ou C- 2C), 75. 1 (CH2Ph), 75. 07 (C-2B ou C-2C), 74. 94 (CH2Ph), 74. 85*2, 74. 77, 72 (4*C-4), 73. 26 (CH2Ph), 73. 18 (CH2Ph), 73. 1 (CH2Ph), 72. 8 (CH2Ph), 72. 6, 72. 26, 72. 22, 71. 5 (4*C- 5), 72.3 (CH2Ph), 72 (CH2Ph), 71.8 (CH2Ph), 69.4, 69. 2, 68. 9, 68. 7 (4*C-6), 68.4 (C-2D). Spectre de masse : m/z 1861. 9 (M+Na)+. Analyse pour C114H118O20S (1840.258) calculée C :74.4 H :6.463 trouvée C :74.3 5) 8-méthoxycarbonyloctyl 2-0-(2-0-(2-0-(3,4,6- tri-O-benzyl-a-D-mannopyranosyl)-3,4,6-tri-0-benzyl-a-D- mannopyranosyl)-3,4,6-tri-0-benzyl-a-D-mannopyranosyl)- 3,4,6-tri-0-benzyl-a-D-mannopyranoside (18a) et 8-méthoxycarbonyloctyl 2-0-(2-0-(2-0-(3,4,6tri-0-benzyl-a-D-mannopyranosyl)-3,4,6-tri-0-benzyl-a-Dmannopyranosyl)-3,4,6-tri-0-benzyl-a-D-mannopyranosyl)- 3,4,6-tri-0-benzyl-5-D-mannopyranoside (18b). Pour le protocole expérimental, voir le composé 10. A partir de 268 mg (146 mol) du composé 17, les deux diastéréomères 18a a-O-connecteur (101 mg, 36%) et 18b P-0-connecteur (100 mg, 36%) sont obtenus après une chromatographie sur gel de silice (élution : cyclohexane acétate d'éthyle=4/1) dans un rapport a/p=l/l. Caractéristique de 18a [alpha]-O-connecteur:[[alpha]]D +35 (c 0. 2, chloroforme) 1H-R.M.N. (400MHz, CDC13) : # 7. 36-7.23 (m, 55H, arom. ), 5. 3 (d, 1H, J 1-2=1.2Hz, H-1B ou H-1C), 5. 27 (d, 1H, J 1-2=1. 6Hz, H-1B ou H-1C), 5.18 (d, 1H, J 1- 2=1.4Hz, H-1D), 4. 99 (d, 1H, J 1-2=1.4Hz, H-lA) , 4. 89 (2d, 2H, J gem=10.9Hz, 2 CHPh), 4.86 (d, 1H, J gem=10.9Hz, CHPh), 4. 82 (d, 1H, J gem=10.5Hz, CHPh), 4. 72 (2d, 2H, 2 CHPh), 4.67 (d, 1H, J gem=12.2Hz, CHPh) , 4.63-4.58 (m, 8H, 8 CHPh), 4. 56 (d, 1H, J gem=12.3Hz, CHPh), 4.55 (d, 1H, J gem=10. 9Hz, CHPh), 4. 54 (d, 1H, J gem=10.9Hz, CHPh), 4. 49 (d, 1H, J gem=10.5Hz, CHPh), 4.48 (d, 1H, J gem=11.5Hz, CHPh), 4. 47 (d, 1H, J gem=11.2Hz, CHPh), 4. 4 (d, 1H, J gem=12. 2Hz, CHPh), 4. 35 (d, 1H, J gem=11.5Hz, CHPh), 4. 21 (d, 1H, J gem=12.3Hz, CHPh), 4. 2-4.19 (m, 1H, H-2D), 4. 185 (dd, 1H, J 2-1=1.6Hz et J 2-3=2. 5Hz, H-2B ou H-2C), 4. 15 (dd, 1H, J 2-1=1.2Hz et J 2-3=2.lHz, H-2B ou H-2C), 4. 03 (dd, 1H, J 2-1=1.4Hz et J 2-3=2.5Hz, H-2A), 4. 01-3.89 (m, 9H, 4*H-3,3*H-5A, B, C ou D, 2*H-4A, B, C ou D), 3. 84-3.72 (m, 5H, 2*H-4A, B, C ou D, 1*H-5A, B, C ou D, 2*H-6A, B, C ou D), 3. 71 (s, 3H, -C:O-OCH3), 3. 67-3.51 (m, 2H, 2*H-6A, B, C ou D), 3. 60 (dt, 1H, J CH-CH2=6. 8Hz et J gem=9.5Hz, - 0-CH-CH2-), 3. 28 (dt, 1H, J CH-CH2=6.6Hz et J gem=9.5Hz, - 0-CH-CH2-), 2. 44 (br, 1H, OH), 2. 34 (t, 2H, J 3-2=7.6Hz, CH2C:O-OCH3), 1. 69-1.62 (m, 2H, -CH2-), 1. 55-1.48 (m, 2H, CH2-), 1. 37-1.27 (m, 8H, -(CH2)4-). 13C R. M.N. (100 MHz) : 8 174.2 (-C:O-OCH3), 138. 6, 138. 55, 138. 5*4, 138. 44, 138. 36*2, 138. 3, 138. 1, 138 (12 C arom.), 128. 4-127.26 (55 CH arom), 101. 1 (C-1B ou C- 1C, lJcH=171.7Hz ou 1JCH=172.9Hz), 100. 9 (C-1B ou C-1C et C- 1D, 1JCH=171.7Hz ou 'JCH=172. 9Hz) , 98.7 (C-1A, 1JCH=168. 5Hz) , 80,79.4*2, 79. 1 (4*C-3), 75.8 (C-2A), 75. 6 (C-2B ou C-2C), 75.13 (C-2B ou C-2C), 75.1 (2*CH2Ph), 74.96 (CH2Ph), 73.9*2, 74.8, 74.3 (4*C-4), 73.3 (CH2Ph), 73.2 (CH2Ph), 73.18 (2*CH2Ph), 72.33 (2*CH2Ph), 72.3, 72,71.76, 71.73 (4*C-5), 72 (CH2Ph), 71. 76 (CH2Ph), 71. 73 (CH2Ph), 69. 6, 69. 5, 63. 35, 68. 8 (4*C-6), 68.5 (C-2D), 67. 65 (-O-CH2-), 69. 8 (CH2Ph), 51.4 (-C:O-OCH3), 34 (-CH2-C:0-0-CH3), 29. 4, 29. 2, 29. 1, 29,26, 24. 9 (-CH2-) Spectre de masse : m/z 1934. 8 (M+NH4)+. Analyse pour C118H132O23 (1918.35) : calculée C :73.88 H :6.93 trouvée C :73.76 Caractéristique de 18b J3-0-connecteur [a] d +2 (c 0. 2, chloroforme) 1H-R.M.N. (400MHz, CDC13) : # 7. 38-7.25 (m, 55H, arom.), 5. 39 (d, 1H, J 1-2=1.5Hz, H-1B ou H-1C), 5. 34 (d, 1H, J 1-2=1.5Hz, H-1B ou H-1C), 5. 23 (d, 1H, J 1- 2=1.45Hz, H-1D), 4.9 (d, H, J gem=10.6Hz, CHPh), 4.89 (d, 1H, J gem=10.9Hz, CHPh), 4. 87 (d, 1H, J gem=10.6Hz, CHPh), 4. 82 (d, H, J gem=12.3Hz, CHPh), 4. 81 (d, 1H, J gem=10.1Hz, CHPh), 4. 79 (d, 1H, J gem=11.5Hz, CHPh), 4.69 (d, 1H, J gem=12.2Hz, CHPh), 4. 68-4.55 (m, 11H, 11 CHPh), 4. 54 (d, 1H, J gem=11.7Hz, CHPh), 4. 52 (d, 1H, J gem=10.6Hz, CHPh), 4. 51 (d, 1H, J gem=11.5Hz, CHPh), 4. 48 (d, 1H, J gem=10.1Hz, CHPh), 4. 41-4.38 (m, 1H, H-5B ou H-5C), 4. 38 (d, 1H, J gem=12.2Hz, CHPh), 4. 3 (s, 1H, H-1A), 4. 27 (d, 1H, J gem=12. 4Hz, CHPh), 4. 25-4.24 (m, 2H, H-2B et H-2C), 4. 2-4.19 (m, 1H, H-2D), 4. 13 (d, 1H, J 2-3=2.3Hz, H-2A), 4. 09 (dd, 1H, J 3-2=2.8Hz et J 3-4=9.6Hz, H-3B ou H-3C), 4. 05 (dd, 1H, J 3-2=2.8Hz et J 3-4=9.1Hz, H-3B ou H-3C), 4.047-3.88 (m, 7H, H-3D, 3*H-4B, B ou D, 3*H-5B, C ou D) , 3. 92-3.89 (m, 1H, -O-CH-CH2-), 3. 8-3.5 (m, 8H, H-4A, 4*H- 6A, B, C et D, -C:O-OCH3), 3. 48 (dd, 1H, J 3-2=2.5Hz et J 3-4=9.4Hz, H-3A), 3. 44-3.39 (m, 2H, H-5A et -O-CH-CH2-), 2. 44 (br, 1H, OH), 2. 34 (t, 2H, J 3-2=7.6Hz, -CH2C:0-OCH3), 1. 67-1.57 (m, 4H, -(CH2)2-), 1. 39-1.28 (m, 8H, -(CH2)4-). 13C R.M.N. (100 MHz) : # 174. 2 (-C:0-OCH3), 138. 9, 138. 77, 138. 66, 138. 65, 138. 56*2, 138. 37, 138. 35, 138. 12*2, 138. 07, 137. 9 (12 C arom. ), 128. 4-127.2 (55 CH arom), 100. 8 (C-1D), 100. 5 (C-1B ou C-1C), 99. 9 (C-1A), 99. 5 (C-1B ou C-1C), 82. 3 (C-3A), 80(C-3D), 79. 7 (C-3B ou C-3C), 79. 5 (C-3B ou C-3C), 75. 6 (C-5A), 75. 3 (C-2B ou C- 2C), 75. 02 (CH2Ph), 75*2 (CH2Ph), 74. 93 (C-4A), 74. 9 (C-2B ou C-2C), 74. 88, 74. 84, 74. 2 (C-4B, C-4C, C-4D), 73. 35 (CH2Ph), 73. 23 (CH2Ph), 73. 21 (CH2Ph), 73. 17 (CH2Ph), 73. 12 (CH2Ph), 72. 5 (C-2A), 72. 34 (CH2Ph), 72. 2, 71. 6, 71. 5 (C- 5B, C-5C, C-5D), 72.1 (CH2Ph), 72 (CH2Ph), 71.8 (CH2Ph), 69.7, 69. 4, 63.37, 69. 2 (4*C-6), 68. 48 (-0-CH2-), 68.46 (C- 2D), 51. 4 (-C:0-OCH3), 34 (-CH2-C:0-0-CH3), 29. 6, 29. 2, 29. 16, 29. 1, 26,24.9 (-CH2-) Spectre de masse : m/z 1934. 95 (M+NH4)+. Analyse pour C118H12O23 (1918.35) : calculée C :73.88 H :6.93 trouvée C :73.84 H:7.16) 8-carboxyloctyl 2-0-(2-0-(2-0-(a-D- mannopyranosyl)-a-D-mannopyranosyl)-a-D-mannopyranosyl)-aD-mannopyranoside et -D-mannopyranoside (II, R= connecteur) . A partir des deux isomères 18a et 18b, deux composés (II R= connecteur) ont été préparés: - Composé a-aglycone Etape 1 : saponification Pour le protocole expérimental, voir l'étape 2 de I (R=connecteur). 18a ( 90 mg, 47 mol) , donne 70 mg (78%) de 8carboxyloctyl 2-0-(2-0-(2-0-(3,4,6-tri-O-benzyl-a-D- mannopyranosyl)-3,4,6-tri-O-benzyl-a-D-mannopyranosyl)- 3,4,6-tri-0-benzyl-a-D-mannopyranosyl)-3,4,6-tri-0-benzyl- a-D-mannopyranoside après une chromatographie sur gel de silice (élution:cyclohexane/acétate d'éthyle=2/1): [[alpha]]D +17 (c 1, chloroforme) 1H-R.M.N. (400MHz, CDC13) : 87.36-7.23 (m, 55H, arom. ), 5. 3 (d, 1H, J 1-2=1.2Hz, H-1B ou H-1C), 5. 27 (d, 1H, J 1-2=1. 6Hz, H-1B ou H-1C), 5.18 (d, 1H, J 1-2=1. 4Hz, H-1D), 4. 99 (d, 1H, J 1-2=1.4Hz, H-1A), Absence du pic caractéristique du méthyle de l'ester méthylique. Spectre de masse : m/z 1920. 86 (M+NH4+)+. Analyse pour C117H130O23 (1904.32) : calculée C :73.79 H :6.88 trouvée C :73.36 Etape 2 : hydrogénolyse Pour le protocole, voir étape 3 de I (R=connecteur). A partir de 48 mg (25 mol) du précurseur, 20 mg (Rdt=95%) sont obtenus pour le composé a-O-connecteur II (R= connecteur). 1H-R.M.N. (400MHz, D20) du composé a-Oconnecteur : 85.25 (d, 1H, J 1-2=1.6Hz, H-1B ou H-1C), 5. 24 (d, 1H, J 1-2=1.5Hz, H-1B ou H-1C), 5. 04 (d, 1H, J 1- 2=1.3Hz, H-1D), 4. 99 (d, 1H, J 1-2=2Hz, H-1A), 3. 69-3.63 (m, 1H, -O-CH-CH2-), 3..48 (dt, 1H, J CH-CH2=6. 2Hz et J gem=9.9Hz, -O-CH-CH2-), 2. 22 (t, 2H, J 3-2=7.5Hz, CH2COOH), 1. 58-1.48 (m, 4H, -(CH2)2-), 1. 3-1.24 (m, 8H, - (CH2)4-). 13C R. M.N. (100 MHz) : 8 102.5, 100. 96, 100. 91, 98. 29 (4 C-1). Spectre de masse (FAB) : calculée C33H58O23Na : m/z 845.32 obtenue : 845. 37 - Composé ss- aglycone Etape 1 : saponification Pour le protocole expérimental, voir l'étape 2 de I (R=connecteur). 18b (89 mg , 46.4 mol) donne 64 mg (72%) de 8carboxyloctyl 2-0-(2-0-(2-0-(3,4,6-tri-O-benzyl-a-D- mannopyranosyl)-3,4,6-tri-O-benzyl-a-D-mannopyranosyl)- 3,4,6-tri-O-benzyl-a-D-mannopyranosyl)- 3,4,6-tri-O-benzyl- P-D-mannopyranoside : [[alpha]]D +19 (c 1, chloroforme) 1H-R.M.N. (400MHz, CDC13) . 87.38-7.25 (m, 55H, arom.), 5. 39 (d, 1H, J 1-2=1.5Hz, H-1B ou H-1C), 5. 34 (d, 1H, J 1-2=1.5Hz, H-1B ou H-1C), 5. 23 (d, 1H, J 1-2=1.45Hz, H-1D), 4. 3 (s, 1H, H-1A), Absence du pic caractéristique du méthyle de l'ester méthylique. Spectre de masse : m/z 1920. 9 (M+NH4+)+. Analyse pour C117H130O23 (1904.32) : calculée C :73.79 H :6.88 trouvée C :73.37 Etape 2 : hydrogénolyse Pour le protocole, voir étape 3 de I (R=connecteur). 18 mg (92%) II (R= connecteur) p-O-connecteur sont obtenu à partir de 45 mg (23.6 mol): 1H-R.M.N. (400MHz, D20) du composé ss-Oconnecteur : 85.33 (d, 1H, J 1-2=1.3Hz, H-1B ou H-1C), 5. 24 (d, 1H, J 1-2=1.8Hz, H-1B ou H-1C), 4. 98 (d, 1H, J 1- 2=l.9Hz, H-1D), 4. 63 (s, 1H, H-lA), 3. 84-3.79 (m, 1H, -0CH-CH2-), 3. 53 (dt, 1H, J CH-CH2=5.8Hz et J gem=9.9Hz, -OCH-CH2-), 2. 22 (t, 2H, J 3-2=7.5Hz, -CH2COOH), 1. 59-1.49 (m, 4H,-(CH2)2-), 1. 3-1.24 (m, 8H, -(CH2)4-). 13C R.M.N. (100 MHz) : 8 102.5, 100.95, 100.91, 99. 99 (4 C-1). Spectre de masse (FAB) : calculée C33H58023Na m/z 845.32 obtenue : 845. 4 7) 2-0-(2-0-(2-0-(3,4,6-tri-O-benzyl-a-D- mannopyranosyl)-3,4,6-tri-0-benzyl-a-D-mannopyranosyl)- 3,4,6-tri-0-benzyl-a-D-mannopyranosyl)-3,4,6-tri-0-benzyl- D-mannopyranose (19). Pour le protocole expérimental, voir l'étape 2 de I (R=H). A partir de 105 mg (57 mol) du composé 17, 84 mg (85%) du composé 19 (a/P=87/13) sont obtenus après une chromatographie sur gel de silice avec élution:cyclohexane/acétate d'éthyle=3/1 puis 2/1. 1H-R.M.N. (400MHz, CDC13) du composé a : 87.4- 7.27 (m, 60H, arom.), 5. 38-5.37 (m, 1H, H-1A) , 5. 34 (d, 1H, J 1-2=1.5Hz, H-1B ou H-1C), 5. 32 (d, 1H, J 1-2=1.7Hz, H-1B ou H-1C), 5. 23 (d, 1H, J 1-2=1.6Hz, H-1D), 2. 83 (br, 1H, OH), 2. 51 (br, 1H, OH). 13C R. M.N. (100 MHz) : # 100. 94 (C-1D), 100. 9 (C-1B ou C-1C), 100. 85 (C-1B ou C-1C), 93. 3 (C-1A). Spectre de masse : m/z 1769. 54 (M+Na)+. Analyse pour C117H130O23 (1748.1) : calculée C :74.2 H:6.57 trouvée C:74.15 H:6.7 8) 2-0-(2-0-(2-0-(a-D-mannopyranosyl)-a-D-manno pyranosyl)-a-D-mannopyranosyl)-D-mannopyranose II (R=H). Pour le protocole expérimental, voir l'étape 3 du composé I (R=connecteur). 30 mg (18 mol) du composé précédent donnent 18 mg (Rdt=95%) du composé II (R=H) après lyophilisation. 1H-R.M.N. (400MHz, D20) du composé a-OH: 8 5.23 (s, 1H, H-1A) , 5. 15 (se, 2H, H-lB et H-1C) , 4.91 (d, 1H, J1-2=1.6Hz, H-1D). Spectre de masse : calculée C24H42021Na . m/z 689. 21 obtenue 689.41 Exemple 3 : Préparation de D-Man [alpha](1-3) D-Man g(l-2) D-Man [alpha](1-2) D-Man [alpha] (1-2), de formule (III). I - Schéma réactionnel. La figure 3 en annexe représente le schéma réactionnel de la préparation de D-Man a(1-3) D-Man a(1-2) D-Man [alpha](1-2) D-Man [alpha] (1-2) de formule (III). Celui-ci est préparé par condensation d'un bloc [alpha](1-3) avec un groupe partant SPh et un bloc [alpha](1-2) dont l'un avec connecteur conformément aux réactions (a"') à (d"') ci-dessous. La réaction (a"') est réalisée dans les conditions suivantes : TfOTMS, tamis moléculaire 4 Angstrom, CH2CI2, -20 C. La réaction (b"') est réalisée dans les conditions suivantes : MeONa, MeOH. La réaction (en') est réalisée dans les conditions suivantes : NIS, TfOH, , tamis moléculaire 4 Angstrom, CH2C12, -20 C. La réaction (d"') est réalisée dans les conditions suivantes : 1-NaOH, THF, eau, 2-H2, Pd/C, MeOH, AcOEt. II - Protocole expérimental. Les composés 22 (Y-M. Zhang, J.-M. Mallet, P. Sina.Carbohydr. Res. 236, (1992), 73-88.) et 21 (P. J. Garegg, H. Hultberg, T Norberg, Carbohydr. Res. 96 (1981) 59-64) sont préparés selon les protocoles de la littérature. 1) 8-méthoxycarbonyloctyl 2-0-(2-0-benzoyl- 3,4,6-tri-0-benzyl-a-D-mannopyranosyl)-3,4,6-tri-O-benzyl- a-D-mannopyranoside (23). 430mg (665 mol, 1 éq) de phényl 2-0-benzoyl- 3,4,6-tri-O-benzyl-1-thio-a-D-mannopyranoside (22) (Y-M. Zhang, J.-M. Mallet, P. Sina.Carbohydr. Res. 236, (1992), 73-88. ) , 412 mg (1 éq) de 8-méthoxycarbonyl 3,4,6-tri-0- benzyl-1-a-D-mannopyranoside (21) (P. J. Garegg, H. Hultberg, T Norberg, Carbohydr. Res. 96 (1981) 59-64) et 1 g de tamis moléculaire sont mis en suspension dans 9 mL de dichlorométhane anhydre et sous atmosphère d'argon. Après 30 mn d'agitation à température ambiante, la solution est refroidie à -20 C. 306 mg (2. 2 éq) de N-iodosuccinimide et 11. 7 L (0. 2 éq) d'acide trifluorométhanesulfonique sont alors successivement ajoutés. Après 30 mn à -20 C, le milieu reactionnel est neutralisé par une solution d'hydrogénocarbonate de sodium. Le tout est filtré sur un lit de célite, la phase organique est lavée par une solution de thiosulfate de sodium et par une solution aqueuse de NaCl. Celle-ci est ensuite séchée sur sulfate de magnésium, filtrée et concentrée sous pression réduite. Une chromatographie du brut (élution:cyclohexane/acétate d'éthyle=4/1) fournit 615 mg (80%) du produit 23 sous la forme d'une huile incolore. [[alpha]]D +5. 2 (c 0. 56, chloroforme) 1H-R.M.N. (400MHz, CDC13) : # 8.15-7.25m(, 35H, arom.),5.85 (dd, 1H, J 2-1=1.8Hz et J 2-3=3.3Hz, H-2B), 5. 27 (d, 1H, J 1-2=1.8Hz, H-1B), 4. 96 (d, 1H, J 1-2=1.66Hz, H-1A), 4. 93 (d, 1H, J gem=10.7Hz, CHPh), 4. 92 (d, 1H, J gem=10.9Hz, CHPh), 4. 83 (d, 1H, J gem=11.1Hz, CHPh), 4. 78 (d, 1H, J gem=12Hz, CHPh), 4. 76 (s, 2H, CH2Ph), 4. 74 (d, 1H, J gem=12.2Hz, CHPh), 4. 62 (d, 1H, J gem=12.2Hz, CHPh), 4. 62 (d, 1H, J gem=10.7Hz, CHPh), 4. 58 (d, 1H, J gem=12Hz, CHPh), 4.57 (d, 1H, J gem=10.9Hz, CHPh), 4.51 (d, 1H, J gem=11.1Hz, CHPh), 4. 19 (dd, 1H, J 3-2=3.3Hz et J 3-4=9Hz, H-3B), 4. 12-4.09 (m, 2H, H-5B et H-4B), 4. 07 (dd, 1H, J 2- 1=1.66Hz et J 2-3=2.9Hz, H-2A), 4 (dd, 1H, J 3-2=2. 9Hz et J 3-4=9.2Hz, H-3A), 3. 94 (dd, 1H, J 6b-6a=10.5Hz et J 6b- 5=3Hz, H-6Bb), 3. 92 (t, 1H, J 4-3=J 4-5=9.2Hz, H-4A), 3. 85- 3. 77 (m, 4H, H-6A, H-6Ba et H-5A), 3. 71 (s, 3H, -C:O-OCH3), 3. 67 (dt, 1H, J gem=9.5Hz et J CH-CH2=6.7Hz, -0-CH-CH2-), 3. 35 (dt, 1H, J gem=9. 5Hz et J CH-CH2=6.7Hz, -O-CH-CH2-), 2. 36 (t, 2H, J CH2-CH2=7. 5Hz, -CH2-C02CH3), 1. 69-1.65, 1. 57-1.54 et 1. 35-1.33 (m, 12H, -CH2-). * 13C R. M.N. (100 MHz) : # 174. 2 (-C:O-OCH3), 165. 4 (-O-C:O), 138. 5, 138. 4, 138. 32, 138. 3, 138. 26, 137.98, 129.9 (7 C arom.), 133-127.35 (35 CH arom), 99.5 (C-1B), 98.6 (C-1A), 79. 73 (C-3A), 78.07 (C-3B), 75. 2 (C- 2A), 75. 1 (CH2Ph), 75 (CH2Ph), 74. 6 (C-4B), 74. 3 (C-4A), 73. 3 (CH2Ph), 73.2 (CH2Ph), 72. 1 (CH2Ph), 71. 9 (C-5B), 71. 7 (C-5A) , 71.6 (CH2Ph) , 69. 2 (C-6A) , 69.15 (C-6B) , 68.98 (C- 2B), 67.64 (-0-CH2-), 51.4 (-C:0-OCH3), 34 (-CH2-COOCH3), 29. 36, 29. 17, 29. 11, 29,26, 24. 9 (-CH2-). Spectre de masse : m/z 1174. 5 (M+NH4)+. Analyse pour C71H80O14 (1157.40) : calculée C :73.68 H :6.96 trouvée C :73.61 2) 8-méthoxycarbonyloctyl 2-0-(3,4,6-tri-O- benzyl-a-D-mannopyranosyl)-3,4,6-tri-O-benzyl-a-Dmannopyranoside (24). 540 mg (467 mol) du composé 23 sont dissous dans 5 mL d'un mélange de solvant méthanol/dichlorométhane=1/1. Du sodium (cat. ) est alors ajouté au mélange. Après 1 heure à température ambiante, la solution est neutralisée par de la résine amberlite IR 120 (H+). Le tout est filtré et concentré sous vide. Une chromatographie du brut (élution:cyclohexane/acétate d'éthyle=2.75/1) fournit 442 mg (Rdt=90%) du produit 24 sous la forme d'une huile incolore. [[alpha]]D +34 (c 0.71, chloroforme) 1H-R.M.N. (400MHz, CDC13) : 8 7.4-7.3m,( 30H, arom.),5.21 (d, 1H, J 1-2=1.45Hz, H-1B), 4. 95 (d, 1H, J 1- 2=1.75Hz, H-1A), 4. 89 (d, 1H, J gem=10.6Hz, CHPh), 4. 87 (d, 1H, J gem=10.9Hz, CHPh), 4. 75 (d, 1H, J gem=12.2Hz, CHPh), 4. 75 (d, 1H, J gem=11.6Hz, CHPh), 4. 71 (d, 1H, J gem=11.6Hz, CHPh), 4.69 (d, 1H, J gem=12.1Hz, CHPh), 4.64 (d, 1H, J gem=11.4Hz, CHPh), 4. 59 (d, 1H, J gem=10.6Hz, CHPh), 4.59 (d, 1H, J gem=12.2Hz, CHPh), 4. 58 (d, 1H, J gem=11.4Hz, CHPh), 4. 56 (d, 1H, J gem=12.1Hz, CHPh), 4. 54 (d, 1H, J gem=10.9Hz, CHPh), 4.2-4.17 (m, 1H, H-2B), 4. 08 (dd, 1H, J 2-1=1.75Hz et J 2-3=2.9Hz, H-2A), 4. 03-3.99 (m, 1H, H-5B), 3. 99 (dd, 1H, J 3-2=2.9Hz et J 3-4=9.3Hz, H-3A), 3. 93 (dd, 1H, J 3-2=3.2Hz et J 3-4=9.lHz, H-3B), 3.89 (t, 1H, J 4-3=J 4-5=9.3Hz, H-4A), 3.86(t, 1H, J 4-3=J 4- 5=9.lHz, H-4B), 3. 86 (dd, 1H, J 6b-6a=ll.lHz et J 6b- 5=4. 95Hz, H-6Ab), 3. 82-3.75 (m, 4H, H-6Aa, H-6B et H-5A), 3. 71 (s, 3H, -C:0-OCH3), 3. 65 (dt, 1H, J gem=9.5Hz et J CHCH2=6.8Hz, -0-CH-CH2-), 3. 3 (dt, 1H, J gem=9. 5Hz et J CHCH2=6.8Hz, -0-CH-CH2-), 2. 51 (d, 1H, J OH-2=1.9Hz, OH), 2. 34 (t, 2H, J CH2-CH2=7.6Hz, -CH2-C02CH3), 1. 7-1.63, 1. 56- 1. 49 et 1. 37-1.27 (m, 12H, -CH2-). 13C R.M.N. (100 MHz) : # 174. 3 (-C:0-OCH3), 138. 5, 138. 35, 138. 3, 138. 25, 138. 1, 137. 9 (6 C arom.), 128. 4-127.3 (30 CH arom), 101 (C-1B), 98. 7 (C-1A), 79. 92 (C-3B), 79. 79 (C-3A), 75. 1 (CH2Ph), 74. 95 (CH2Ph), 74. 93 (C-2A), 74. 76 (C-4A), 74. 3 (C-4B), 73. 3 (CH2Ph), 73.2 (CH2Ph), 72. 8 (CH2Ph), 72 (CH2Ph), 71. 7 (C-5B), 71. 7 (C- 5A), 69. 2 (C-6A), 69 (C-6B), 68. 45 (C-2B), 67. 63 (-O-CH2-), 51. 4 (-C:O-OCH3), 34 (-CH2-COOCH3), 29. 4, 29.2, 29.1, 29, 26,24.9 (-CH2-). Spectre de masse : m/z 1070. 5 (M+NH4)+. Analyse pour C64H76013 (1053.30) : calculée C :72.98 H:7.27 trouvée C:72.89 H:7.43 3) Phenyl 2-0-acétyl-4,6-0-benzylidène-l-thio- a-D-mannopyranoside (25). 2 g (5.5 mmol, 1 éq) de phényl 4,6-0- benzylidène-1-thio-a-D-mannopyranoside ~1 et 292 mg (1.2 mmol, 0. 2 éq) d'acide 10-DL-camphorsulphonique sont dissous dans 10 mL de triéthyl orthoacétate. Après 30 mn à température ambiante, 14. 4 mL d'acide acétique 80% sont ajoutés à la solution préalablement refroidie à 0 C. Après 1 heure en laissant remonter la température à l'ambiante, le tout est concentré et chromatographié sur gel de silice (élution:cyclohexane/acétate d'éthyle=2/1). 1. 67 g (75%) du composé 25 sont obtenus, après évaporation des solvants, sous forme d'une poudre blanche. pf : 157-158 C; [[alpha]]D +169 (c 1. 05, chloroforme) 1H-R.M.N. (400MHz, CDC13) : # 7.56-7.3m ( 10H, arom.),5.66 (s, 1H, by), 5. 52 (s, 1H, H-1), 5. 51 (dd, 1H, J 2-1=1.3Hz et J 2-3=3.3Hz, H-2), 4. 41 (ddd, 1H, J 5- 4=9.7Hz, J 5-6a=10.3Hz et J 5-6b=4.9Hz, H-5), 4. 29 (dd, 1H, J 6b-6a=10.3Hz et J 6b-5=4. 9Hz, H-6b), 4. 28-4.25 (m, 1H, H- 3), 4.04(t, 1H, J 4-3=J 4-5=9.7Hz, H-4), 3. 89 (t, 1H, J 6b- 6a=J 6b-5=10.3Hz, H-6a), 2. 65 (d, 1H, J OH-3=3.5Hz, OH), 2. 21 (s, 3H, 0-C:0-CH3). 13C R. M.N. (100 MHz) : # 170. 3 (-0-C:0-CH3), 136. 9, 133 (2 C arom. ), 132-126. 2 (10 CH arom. ), 102. 2 (by), 86. 8 (C-1), 79 (C-4), 73.5 (C-2), 68. 3 (C-6), 67. 7 (C-3), 64.5 (C-5A), 20. 9 (-0-C:0-CH3). Spectre de masse : m/z 403.2 (M+H)+. Analyse pour C21H22O6S (402.46) : calculée C :62.67 H :5.509 trouvée C :62.66 4) Phényl 3-0-(2-0-acétyl-3,4,6-tri-0-benzyl-aD-mannopyranosyl)-2-0-acétyl-4,6-0-benzylidéne-1-thïo-a-D- mannopyranoside (26). 731 mg (1.15 mmol, 1. 1 éq) de O-(2-0-acétyl- 3,4,6-tri-O-benzyl-a-D-mannopyranose) trichloroacétimidate (12), 420 mg (1.044 mmol, 1 éq) du composé 25 et 1. 3 g de tamis moléculaire sont mis en suspension dans 12 mL de dichlorométhane anhydre et sont maintenus sous atmosphère d'argon. Après 30 mn d'agitation à température ambiante, la solution est refroidie à -20 C et 22 L (0. 1 éq) de trifluorométhanesulfonate de triméthylsilyle sont injectés. Après 1 heure d'agitation, l'ensemble est neutralisé par une solution d'hydrogénocarbonate de sodium, filtré sur célite. la phase organique séparée est lavée par une solution aqueuse de NaCl, séchée sur sulfate de magnésium, filtrée et concentrée sous vide. Le brut est chromatographié sur gel de silice (élution:cyclohexane/acétate d'éthyle=4/1) et 626 mg (Rdt=68%) du composé 26 sont ainsi isolés sous la forme d'une mousse blanche.pf : 58-59 C; [[alpha]]D +119 (c 0.55, chloroforme) 1H-R.M.N. (400MHz, CDC13) : # 7.47-7.25m(, 25H, arom.),5.69 (s, 1H, by) , 5.55 (dd, 1H, J 2-1=1. 8Hz et J 2- 3=2.7Hz, H-2D), 5.52 (dd, 1H, J 2-1=1.3Hz et J 2-3=3.4Hz, H-2C), 5. 49 (d, 1H, J 2-1=1.3Hz, H-1C), 5. 34 (d, 1H, J 1- 2=1.8Hz, H-1D), 4. 89 (d, 1H, J gem=10.9Hz, CHPh), 4. 77 (d, 1H, J gem=12.2Hz, CHPh), 4. 74 (d, 1H, J gem=11.4Hz, CHPh), 4.56 (d, 1H, J gem=12.2Hz, CHPh), 4.56 (d, 1H, J gem=11.4Hz, CHPh), 4.54 (d, 1H, J gem=10.9Hz, CHPh), 4.42 (ddd, 1H, J 5-4=9.8Hz, J 5-6b=4.9Hz et J 5-6a=10.3Hz, H- 5C), 4. 4 (dd, 1H, J 3-2=3.4Hz et J 3-4=9.8Hz, H-3C), 4. 3 (dd, 1H, J 6b-6a=10. 3Hz et J 6b-5=4.9Hz, H-6Cb), 4. 2 (t, 1H, J 4-3=J 4-5=9.8Hz, H-4C), 3. 97-3.87 (m, 4H, H-5D, H-4D, H-3D et H-6Ca), 3. 86 (dd, 1H, J 6b-6a=12Hz et J 6b-5=3.9Hz, H-6Db), 3. 78 (dd, 1H, J 6a-6b=12Hz et J 6a-5=3.3Hz, H-6Da), 2. 21 et 2. 16 (2s, 6H, 2 0-C:0-CH3). 13C R. M.N. (100 MHz) : # 170. 1 et 169. 7 (2 -0C:0-CH3), 138. 4, 138. 2, 137. 9, 136. 9, 133 (C arom. ), 132-125. 9 (25 CH arom.), 101. 3 (by), 98.8 (C-1D) , 86.8 (C-1C) , 78. 9 (C-4C) , 75.6, 74.1 et 72.1 (C-3D, C-4D et C-5D), 74. 9 (CH2Ph), 73. 4 (CH2Ph), 73. 1 (C- 2C), 71. 7 (CH2Ph), 70. 8 (C-3C), 68. 6 (C-6D), 68. 4 (C-2D), 68. 2 (C-6C), 64. 6 (C-5C), 21 et 20. 8 (2 -0-C:0-CH3). Spectre de masse : m/z 894.3 (M+NH4)+. Analyse pour C50H52O12S (877.02) : calculée C :68.47 H :5.976 trouvée C :68.36 5) 8-méthoxycarbonyloctyl 2-0-(2-0-(3-0-(2-0- acétyl-3,4,6-tri-0-benzyl-a-D-mannopyranosyl)-2-0-acétyl- 4,6-0-benzylidène-a-D-mannopyranosyl)-3,4,6-tri-0-benzyl-a- D-mannopyranosyl)-3,4,6-tri-0-benzyl-a-D-mannopyranoside (27) . 158 mg (180 mol, 1 éq) du composé 26,186 mg (1 éq) du composé 24 et 500 mg de tamis moléculaire sont mis en solution dans 5 mL de dichlorométhane anhydre et sont maintenus sous atmosphère d'argon. Après 30 mn d'agitation, la solution est refroidie à -20 C et 81 mg (2 éq) de N-iodosuccinimide ainsi que 4 (iL (0. 3 éq) d'acide trifluorométhanesulfonique sont additionnés au milieu. Après 30 mn d'agitation, le tout est neutralisé par une solution d'hydrogénocarbonate de sodium et flitré sur un lit de célite. La phase organique est alors lavée par une solution de thiosulfate de sodium, par une solution aqueuse de NaCl, séchée sur sulfate de magnésium, filtrée et concentrée sous pression réduite. Le brut est chromatographié sur gel de silice (élution:cyclohexane/acétate d'éthyle=5/1) et 236 mg (Rdt=72%) du produit 27 sont ainsi isolés sous la forme d'une huile incolore.[[alpha]]D +29 (c 0. 85, chloroforme) 1H-R.M.N. (400MHz, CDC13) : 8 7.38-7.25m(, 50H, arom.),5.66 (s, 1H, by), 5.56 (dd, 1H, J 2-1=1.5Hz et J 2- 3=3Hz, H-2D), 5. 44 (dd, 1H, J 2-1=1.3Hz et J 2-3=3.5Hz, H- 2C), 5. 32 (se, 1H, H-1D), 5. 2 (se, 1H, H-1B), 5. 04 (se, 1H, H-1C), 4.94 (se, 1H, H-1A), 4.88 (d, 1H, J gem=10.6Hz, CHPh), 4. 88 (d, 1H, J gem=10.7Hz, CHPh), 4. 87 (d, 1H, J gem=10.9Hz, CHPh), 4. 75 (d, 1H, J gem=12.4Hz, CHPh), 4. 75 (d, 1H, J gem=11.2Hz, CHPh), 4. 72 (s, 2H, CH2Ph), 4. 67 (d, 1H, J gem=12.3Hz, CHPh), 4.67 (d, 1H, J gem=12Hz, CHPh), 4. 61 (d, 1H, J gem=12.4Hz, CHPh), 4. 6 (d, 1H, J gem=10.6Hz, CHPh), 4. 6 (d, 1H, J gem=12Hz, CHPh), 4. 58 (s, 2H, CH2Ph), 4. 57 (d, 1H, J gem=11.2Hz, CHPh), 4. 53 (d, 1H, J gem=10.9Hz, CHPh), 4.52 (d, 1H, J gem=10.7Hz, CHPh), 4.33 (d, 1H, J gem=12.3Hz, CHPh), 4. 43 (dd, 1H, J 3-2=3.5Hz et J 3-4=9.3Hz, H-3C), 4. 21 (dd, 1H, J 6b-6a=10.4Hz et J 6b- 5=4.5Hz, H-6Cb), 4. 14-4.12 (m, 1H, H-2B), 4. 09 (t, 1H, J 4- 3=J 4-5=9.3Hz, H-4C), 4. 07-4.04 (m, 1H, H-5C), 4. 03 (t, 1H, J 4-3=J 4-5=9.9Hz, H-4D), 4.01-4 (m, 1H, H-2A), 3.98-3.96 (m, 1H, H-3B), 3. 93 (dd, 1H, J 3-2=3Hz et J 3-4=9.9Hz, H- 3D) , 3.88-3.85 (m, 1H, H-5D), 3. 71 (s, 3H, -C:0-OCH3), 3.62-3.59 (m, 1H, H-6Da), 3.6-3.56 (m, 1H, -O-CH-CH2-), 3. 25 (dt, 1H, J gem=9. 4Hz et J CH-CH2=6.6Hz, -O-CH-CH2-), 2. 34 (t, 2H, J CH2-CH2=7.5Hz, -CH2-C02CH3), 2. 14 et 2.13 (2s, 6H, 2 0-C:0-CH3), 1. 7-1.62, 1. 54-1.47 et 1. 35-1.25 (m, 12H, -CH2-). 13C R. M.N. (100 MHz) : # 174. 3 (-C:O-OCH3), 170. 1 et 169. 5 (2 -O-C:O-CH3), 138. 6, 138. 55, 138. 3*2, 138. 29*2, 138. 23, 138. 2, 137. 98, 137 (10 C arom. ), 128.7- 125. 9 (50 CH arom. ), 101.2 (by), 100. 6 (C-1B, lJcH=171.3Hz), 99.8 (C-1C, 1 J"CH=172 . 2Hz ) , 98.8 (C-1D, IJcH=174Hz), 98.6 (C-1A, lJcH=170.5Hz), 79.3 (C-3B), 78.9 (C-4C), 77.7 (C-3D), 75.56 (C-2A), 75.4 (C-2B), 75.13 (CH2Ph) , 75. 06 (CH2Ph) , 74. 87 (CH2Ph) , 73.9 (C-4D) , 73.24 (CH2Ph), 73. 22 (CH2Ph), 73. 2 (CH2Ph), 72. 17 (CH2Ph), 72. 09 (CH2Ph), 72 (C-5D), 71. 7 (CH2Ph), 71. 4 (C-2C), 70. 8 (C-3C), 68. 05 (C-2D), 68. 4 (C-6C), 67. 63 (-O-CH2-), 51.4(-C:O- OCH3), 34 (-CH2-COOCH3), 29. 4, 29. 2, 29. 1, 29,26, 24. 9 (CH2-), 21 et 20. 8 (2 -0-C:0-CH3). Spectre de masse : m/z 1836.5 (M+NH4) +. Analyse pour C108122O25 (1820.026) : calculée C :71.27 H:6.75 trouvée C :71.08 H:6.946) 8-carboxyloctyl 2-0-(2-0-(3-0-(a-D- mannopyranosyl)-a-D-mannopyranosyl)-a-D-mannopyranosyl)-aD-mannopyranoside III. Etape 1 : saponification 200 mg (110 mol, 1 éq) du précurseur 27 sont dissous dans 10 mL d'un mélange tétrahydrofurane/solution d'hydroxyde de sodium (0.1N) (1/1). Après une nuit à reflux, l'ensemble est acidifié et extrait trois fois par du dichlorométhane. La phase organique est alors séchée sur sulfate de magnésium, filtrée et concentrée sous vide. Le produit brut est chromatographié sur gel de silice (élution:cyclohexane/acétate d'éthyle=1.5/1) et 155 mg (Rdt=82%) du composé sont ainsi isolés sous la forme d'une huile incolore. 8-carboxyloctyl 2-0-(2-0-(3-0-(3,4,6-tri-0- benzyl-a-D-mannopyranosyl)-4,6-0-benzylidène-a-Dmannopyranosyl)-3,4,6-tri-0-benzyl-a-D-mannopyranosyl)- 3,4,6-tri-0-benzyl-a-D-mannopyranoside [a]o +33.3 (c 0.52, chloroforme) 1H-R.M.N. (400MHz, CDC13) : # 7.5-7.25m( 50H, arom. ),5.6 (s, 1H, by), 5. 21 (d, 1H, J 1-2=1.3Hz, H-1B), 5. 16 (d, 1H, J 1-2=1.45Hz, H-1D), 5. 12 (d, 1H, J 1-2=1.lHz, H-1C), 4.97 (d, 1H, J 1-2=1.2Hz, H-1A), 4.42-4.41 (m, 1H, H-2C), 4. 18-4.17 (m, 1H, H-2B), 4. 08 (m, 1H, H-2D), 4 (dd, 1H, J 2-1=1.2Hz et J 2-3=3.lHz, H-2A), 3. 6 (dt, 1H, J gem=9. 5Hz et J CH-CH2=6.5Hz, -0-CH-CH2-), 3. 27 (dt, 1H, J gem=9.5Hz et J CH-CH2=6.5Hz, -0-CH-CH2-), 2. 35 (t, 2H, J CH2-CH2=7. 5Hz, -CH2-C02H), 1. 7-1.6, 1. 54-1.47 et 1.35-1.25 (m, 12H, -CH2-). Absence des trois pics correspondant aux méthyles des esters. 13C R. M.N. (100 MHz) : # 178. 5 (-C02H), 102. 3 (C-1C), 101. 7 (by), 100. 9 (C-lB), 99. 8 (C-lD), 98. 5 (C-lA), 75. 7 (C-2A), 74. 8 (C-2B), 69. 65 (C-2C), 68. 5 (C-2D), 67. 6 (-O-CH2-), 33. 8 (-CH2-COOH), 29. 3, 29,28.9, 28. 7, 25. 9, 24. 5 (-CH2-), 21 et 20. 8 (2 -0-C:O-CH3). Spectre de masse : m/z 1738. 9 (M+NH4)+. Analyse pour C103H116O23 (1722.059) : calculée C :71.84 H :6.789 trouvée C :71.73 Etape 2 Pour le protocole expérimental, voir l'étape 3 du composé I (R=connecteur). 100 mg (58 pmol) du composé précédent donne 40 mg (Rdt=83%) du composé III sous la forme d'une poudre blanche amorphe après lyophilisation. 1H-R.M.N. (400MHz, D20) : 85.25 (d, 1H, J 1- 2=1.2Hz, H-1B), 5. 1 (d, 1H, J 1-2=1.3Hz, H-1D), 5. 05 (d, 1H, J 1-2=0.8Hz, H-1A), 4. 99 (d, 1H, J i-2=1.4Hz, H-1C), 4.19 (dd, 1H, J 2-1=1.42Hz et J 2-3=3Hz, H-2C), 4. 07 (dd, 1H, J2-1=1.2Hz et J 2-3=3.1Hz, H-2B), 4. 03 (dd, 1H, J 2- 1=1.3Hz et J 2-3=3.3Hz, H-2D), 3. 9-3.88 (m, 1H, H-2A), 3. 92 (dd, 1H, J 3-2=3.lHz et J 3-4=9.6Hz, H-3B), 3. 91 (dd, 1H, J 3-2=3Hz et J 3-4=9.4Hz, H-3C), 3. 72-3.65 (m, 1H, -0-CH-CH2- ), 3.49 (dt, 1H, J gem=10Hz et J 1a-CH2=6.2Hz-0-CH-CH2-), 2. 32 (t, 2H, J CH2-CH2=7. 4Hz, -CH2-C02H), 1. 6-1.5 et 1.33- 1. 26 (m, 12H, -CH2-) . 13C R. M.N. (100 MHz) : 8 178. 3 (-C02H), 102. 5 (C-1D), 102. 49 (C-1C), 100. 99 (C-lB), 98. 3 (C-1A), 79. 3 (C- 2A), 78. 9 (C-2B), 78. 2 (C-3C), 73. 66, 73. 6*2, 73 (4*C-5), 70. 63 (C-3D), 70. 61 (C-3A), 70. 34 (C-2D), 70. 28 (C-3B), 69. 9 (C-2C), 68.3 (-O-CH2-), 67. 4, 67. 24, 67. 2, 66. 5 (4*C- 4), 61. 4*2, 61. 3, 61.2 (4*C-6), 34. 6 (-CH2-COOH), 28.7, 28.56, 28.55, 28.48, 25.6, 24.6 (-CH2-). Spectre de masse (FAB négatif) : calculée C33H57023 : m/z 821. 32 obtenue 821.32 Exemple 4 : Synthèse des dimannosides VII. La figure 4 en annexe représente le schéma réationnel du protocole décrit ci-dessous. 1) 2-O-(3-0-benzyl-4,6-O-benzVlidène-(3-D-manno pyranosyl)-3-0-benzyl-4,6-0-benzylidène-D-mannopyranoside (28) . Pour le protocole expérimental, voir l'étape 2 du composé 9. 6 (200 mg , 252 mol, 1 éq) donne 160 mg (Rdt=90%) du composé 28 ([alpha]/ss=1/1) sous forme d'une mousse blanche après une chromatographie sur gel de silice (élution:cyclohexane/acétate d'éthyle=1.5/1). 1H-R.M.N. (250MHz, CDC13) du mélange a-OH et ssOH : 5 7.46-7.16 (m, 20H, arom. ) , 5.49*3 et 5.43 (2s, 4H, 4*by) , 5. 21 (se, 1H, H-1), 4. 89-4.59 (m, 11H, 3*H-1 et 4*CH2Ph), 4. 35-3.55 (m, 20H, 4*H-2,4*H-3, 4*H-4 et 4*H-6), 3. 4-3.21 (m, 4H, 4*H-5). Spectre de masse : m/z 716 (M+NH4)+. Analyse pour C4oH42011 (698.77) : calculée C :68.75 H:6.058 trouvée C:68.50 H:6.26 1 ) 2 - 0 - ( 3 -D-mannopyranosyl) -D-mannopyranose (IV, R=H) . Pour le protocole expérimental, voir l'étape 3 du composé (I, R=connecteur). 28 ( 130 mg (35 mol) donne 56. 7 mg (Rdt=85%) de (IV, R=H) sous la forme d'une poudre amorphe blanche après lyophilisation. 1H-R.M.N. (400MHz, D20) du composé a-OH . # 5. 27 (d, 1H, J 1-2=1.7Hz, H-1A), 4. 76 (s, 1H, H-1B), 4. 11 (dd, 1H, J 2-1=1.7Hz et J 2-3=3.3Hz, H-2A), 4.03 (d, 1H, J 2-3=3.lHz, H-2B), 3. 84 (dd, 1H, J 3-2=3.3Hz et J 3-4=9.7Hz, H-3A), 3. 63 (dd, 1H, J 3-2=3.lHz et J 3-4=9.5Hz, H-3B). 13C R. M.N. (100 MHz) : # 99. 01 (C-1B), 92. 25 (C-1A), 78. 30 (C-2A), 71. 13 (C-2B). 1H-R.M.N. (400MHz, D20) du composé ss-OH : # 4.97 (s, 1H, H-1A) , 4.81 (s, 1H, H-1A) , 4. 17 (d, 1H, J 2- 3=3Hz, H-2A), 4. 16 (d, 1H, J 2-3=3. 3Hz, H-2B), 3. 65-3.61 (m, 2H, H-3A et H-3B). 13C R. M.N. (100 MHz) : # 101.18 (C-lB) , 93.99 (C-1A), 79. 68 (C-2A), 70. 63 (C-2B). Spectre de masse HRMS : (M-OH+NH3) calculée : 342. 1400 observée : 342. 1391 (M +NH4) + calculée : observée: 360.1517 2) 8-méthoxycarbonyloctyl 2-0-(3-0-benzyl-4,6- O-benzylidène-p-D-mannopyranosyl) -3-O-benzyl-4, 6-0- benzylidène-D-mannopyranoside (29). Pour le protocole expérimental, voir le composé 10. 6 (250 mg, 316 mol) donne 190 mg (Rdt=70%) du composé 29 (mélange [alpha]/ss=1/1, non séparables) , sous forme d'une huile incolore après chromatographie sur gel de silice (élution:cyclohexane/acétate d'éthyle=1.5/1) 1H-R.M.N. (250MHz, CDC13) : # 7.45-7.18m(, 20H, arom.),5.51*2, 5. 49 et 5. 43 (2s, 4H, 4*by), 4. 86 (s, 1H, H-1), 4. 80-4.67 (m, 10H, 2*H-1 et 4*CH2Ph), 4. 41 (s, 1H, H-l), 4. 31-3.53 (m, 28H, 4*H-2,4*H-3, 4*H-4,4*H-6, 2*- C:O-O-CH3 et 2*-O-CH2 -), 3. 42-3.21 (m, 6H, 4*H-5 et 2*-0CH2-), 2. 26-2.18 (m, 4H, 2*-CH2-C02CH3), 1. 54-1.18 (m, 24H, -0-CH2-(CH2)6-CH2-C:0-) Spectre de masse : m/z 886 (M+NH4)+. Analyse pour C50H60O13 (869.028) : calculée C :69.10 H :6.959 trouvée C :68.55 3) 8-carboxyloctyl 2-O-((3-D-mannopyranosyl)-D- mannopyranoside (VII, R=connecteur). - Etape 1 : Pour le protocole expérimental, voir l'étape 2 du composé (I, R=connecteur). 60 mg (69 pmol) du précurseur 29 fournissent 42 mg (Rdt=72%) après chromatographie sur gel de silice avec élution: cyclohexane/acétate d'éthyl=l/l sous la forme d'une poudre blanche. 1H-R.M.N. (250MHz, CDC13) . # 7.45-7.18m(, 20H, arom.),5.51*2, 5. 49 et 5. 43 (2s, 4H, 4*by). Absence du pic caractéristique du méthyle de l'ester méthylique. Spectre de masse HRMS :m/z calculée : 855. 3956 observée : 855. 3958 Analyse pour C4oH420n (855.0008) : calculée C:68.83 H:6.837 trouvée C:68.64 H:7.10 Etape 2 : Pour le protocole expérimental, voir l'étape 3 du composé (I, R=connecteur). A partir de 30 mg (35 mol) de l'intermédiaire précédent, 15 mg (Rdt=92%) de (VII, R=connecteur) sous la forme d'une poudre amorphe sont récupérés après lyophilisation. 1H-R.M.N. (400MHz, D20) du composé a-Oconnecteur: # 4. 97 (s, 1H, H-lA), 4. 75 (s, 1H, H-1B) , 4. 12 (d, 1H, J 2-3=3Hz, H-2A), 4. 03 (d, 1H, J 2-3=2.9Hz, H-2B), 3. 91-3.87 (m, 1H, -O-CH-), 3. 81 (dd, 1H, J 3-2=3Hz et J 3- 4=9.8Hz, H-3A), 3. 65-3.61 (m, 1H, -0-CH-), 3. 62-3.59 (m, 1H, H-3B), 2. 3 (t, 2H, J CH2-CH2=7.4Hz, -CH2-C02H), 1. 63- 1. 56 (m, 4H, -(CH2)2-), 1. 35-1.29 (m, 8H, -(CH2)4-). 13C R. M.N. (100 MHz) : # 98. 94 (C-1B, 1JC- H=155Hz), 97. 83 (C-1A, 1JC-H=170Hz), 77. 58 (C-2A), 71. 1 (C- 2B) . 1H-R.M.N. (400MHz, D20) du composé ss-O- connecteur : # 4. 83 (s, 1H, H-1B), 4. 72 (s, 1H, H-lA), 4. 24 (d, 1H, J 2-3=2.9Hz, H-2A), 4. 11 (d, 1H, J 2-3=2.9Hz, H- 2B), 3.77-3.72 (m, 1H, -0-CH-), 3.66-3.61 (m, 2H, H-3A et H-3B), 3. 57-3.51 (m, 1H, -0-CH-), 2. 3 (t, 2H, J CH2- CH2=7.4Hz, -CH2-C02H), 1.63-1.56 (m, 4H, -(CH2)2-), 1. 35- 1. 29 (m, 8H, -(CH2)4-). 13C R. M.N. (100 MHz) : # 101. 04 (C-1B, 1JCH=161.8Hz), 100. 45 (C-1A, 1JC-H=157.5Hz), 78. 4 (C-2A), 70. 7 (C-2B) . Spectre de masse HRMS: (M-OH+NH3) calculée : 498. 2551 observée : 498. 2531 (M +NH4)+ calculée : 516.2656 observée: 516. 2671 Exemple 5 : Procédures de couplage covalent des oligomannosides de synthèse de l'invention. Ce couplage présente les avantages suivants : surface robuste et adaptée au tests d' immunoanalyse - meilleure orientation de la biomolécule - densité plus élevée en épitopes - moins de problème de reconnaissance de 1 'anticorps : site antigénique accessible Utilisation de la carbodiimide : Cette méthode consiste à activer les groupements acide carboxylique des biomolécules elles-mêmes pour du carbodiimide, qui conduit à un ester activé puis à la formation de liaisons amides avec les groupes amine primaire de la surface (Nunc TechNote Vol. 4 N 27-28). La carbodiimide hydro-soluble (EDC : 1-ethyl-3-(3dimethylaminopropyl) carbodiimide) est utilisée pour activer les groupements-COOH de la biomolécule en présence du sulfo-N-hydroxy succinimide (sulfo-NHS : N- hydroxysuccinimide) (Timkovich, R., 1977, Anal. Biochem. 79 : 139-143 ; Staros, J. V., et al., 1986, Anal. Biochem. 156 : 220-222 ; Rasmussen, S. E., 1990, Ann. Biol. Clin. 48 :647-50). Le sulfo-NHS supprime de manière efficace l'hydrolyse du produit activé et permet la fixation du sucre de synthèse à la surface de la plaque déjà sensibilisée par le groupement NH2. 1) Matériel : Dissoudre tous les réactifs de couplage dans l'eau distillée. Le reste des réactifs est reconstitué dans l'eau déminéralisée. - Covalink NH2 C8 (Cat. Polylabo. N N70897). - Sucres de synthèse tetramannose Plié à une chaine de 8 carbones (bras Lemieux): 200 mg. - Sulfo-NHS : sulfo-N-hydroxysuccinimide, PIERCE cat. N 24510. - EDC : 1-ethyl-3-(3-dimethylaminopropyl)- carbodiimide, Novabiochem, PIERCEN 01-62-0011. - PBS 0. 15 M Na+, pH7. 2, Sigma. - PBS/Tween PBS, 0.05% ; Tween 20, Sigma. - PBS/Tween/BSA : PBS/Tween, 0.5% BSA - Lait écrémé. 2) Protocole : Le tétramannoside de synthèse est utilisé sur deux plaques différentes. A partir d'une solution mère de sucre à 0,8 mg/ml on réalise 6 dilutions de raison 2 pour obtenir une gamme de concentration de 40 à 1,25 ug/ml dans l'eau distillée. On prépare de manière extemporanée une solution de : NHS 3,48 mg/ml EDC 3,07 mg/ml On prévoit plusieurs puits pour le blanc et les contrôles (sucres sans réactifs de couplage, un témoin pour le conjugué) Activation et couplage : - On dépose successivement la solution de sucres à raison de 100 l par puits : NHS 50 ul/puits EDC 50 ul/puits - On couvre les plaques à l'aide d'un film plastique - On incube les plaques pendant une nuit à température ambiante et sous agitation douce. Lavages et Saturation : Trois lavages avec de l'eau (300 ul/puits). Saturation avec 300 ul/puits d'une solution de lait écrémé à 5% dans le tampon PBS. Incubation 1 heure à température ambiante 5 lavages par le PBS-Tween 20 (0,05%) à raison de 300 ul/puits Détection par méthode ELISA : - Les sucres ainsi couplés peuvent être détectés par l'anticoprs monoclonal 5B2 dilué au 250ème dans une solution PBS-Tween-BSA puis déposer 100 ul/puits. - 5 lavages avec une solution PBS-Tween Révélation : - Déposer 100 ul/puits de conjugué (exemple : anti-IgM de rat dilué au 500ème pour révéler le 5B2) dans une solution PBS-Tween-BSA puis incuber une heure à température ambiante - 5 Lavages PBS/Tween (300 ul/puits). - Révélation par l'addition d'un substrat chromogène à base du tetraméthylbenzidine (TMB) : - 200 l de TMB (Kit de révélation , Sanofi Diagnostics Pasteur, Marnes-La-Coquette) - Incuber les plaques à température ambiante pendant une demi heure - Arrêter la réaction par 100 ul/puits par une solution de H2SO4 2N. Lecture : - Filtre de lecture 450 nm - Filtre de référence 620 nm Exemple 6 : Réactivité des oligomannosides de synthèse vis à vis d'anticorps produits contre des oligomannosides naturels. 1) Oligomannosides de synthèse mimant les activités antigéniques des oligomannosides naturels de levures du genre Candida. a) Anticorps polyclonaux. Les anticorps polyclonaux monospécifiques commercialisés par la firme Iatron sont préparés par immunisation de lapins avec des levures entières puis adsorbés par des levures d'espèces hétérologues. Ils permettent, utilisés en batterie, une identification par agglutination des principales espèces de Candida impliquées en pathologie humaine. Chacun de ces " facteurs " réagit avec des épitopes spécifiques qui ont été identifiés par toute une série d'études immunochimiques conduites au Japon. Les résultats de ces études sont synthétisés dans la publication de S. Suzuki (Suzuki, S. et al., 1997, Curr. Top. Med. Mycol. 8 :57-70). Les figures 5 et 6 rapportent les tests effectués sur le facteur 5 ( ), spécifique des ss-1,2 oligomannosides et le facteur 1 (#) réagissant avec les a- 1,2 oligomannosides vis à vis des mannotétraoses de synthèse d'anomérie a et ss-1,2. Les figures 5 et 6 attestent de la spécificité des réactions observées. b) Anticorps monoclonaux. Plusieurs anticorps monoclonaux ont été décrits dans la littérature pour réagir avec des ss-1,2 oligomannosides de C. albicans. La figure 7 rapporte la réactivité du D-Man (1-2) D-Man (3(1-2) D-Man (1-2) D-Man avec plusieurs de ces anticorps monoclonaux. L'anticorps 5B2 (Cailliez, J. C. et al. 1988, Ann. Inst. Pasteur. Microbiol. 139 :171-88 ; Hopwood, V. et al. 1986, Infect. Immun. 54 : 222-227 ; Poulain, D. et al. 1991, Mycoses 34 : 221-226 ; Trinel, P.A., 1992, Infect. Immun. 60 : 3845-3851) généré par notre équipe (Dr. Poulain). Cet anticorps détecte des oligomannnosides circulants dans les sérums d'animaux et de patients infectés par C. albicans. L'anticorps AF1 généré par A. Cassone (De Bernardis, F. et al., 1993, J. Clin. Microbiol. 31 : 3142- 3146 ; De Bernardis, F. et al. 1994, Infect. Immun. 62 : 509-519 ; Girmenia, C. et al., 1997, J. Clin. Microbiol. 35 : 903-906 ; Torosantucci, A. et al., 1990, J. Gen. Microbiol. 136 : 2155-2263). Cet anticorps protège les rates dans des modèles expérimentaux de candidose vaginale. Les anticorps 10G et B6.1 générés par J. Cutler (Li, R. et al., 1991, J. Gen. Microbiol. 137 :455- 464 ; Li, R. et al., 1993, J. Biol . Chem. 268 : 18293-8 ; Kanbe, T. et al., 1994, Infect. Immun. 62 : 1662-8 ; Han, Y. et al., 1995, Infect. Immun. 63 : 2714-9 ; Han, Y. et al., 1997, J. Infect. Dis. 175 : 1169- 75 ; Y. et al., 1997, Infect. Immun. 65 : 4100-7 ; Han, Y. et al., 1998, Infect. Immun. 66 : 5771-6 ; Zhang, M. X. et al., 1998, Infect. Immun. 66 : 6027-9). Ces anticorps réagissent contre des adhésines de C. albicans et protègent les souris dans des modèles expérimentaux de candidose disséminée. A titre de témoin nous avons utilisé un anticorps monoclonal dénommé CA1, produit par SanofiDiagnostic Pasteur et qui reconnaît des séquences (X-1,2 mannose (Jacquinot, P. M. et al., 1998, FEMS Microbiol. Lett. 169 : 131-8 ; Poulain, D. et al. 1991, Mycoses 34 : 221-226 ; Trinel, P.A., 1992, Infect. Immun. 60 : 3845- 3851) . Les résultats de la figure 7 montrent que les sucres de synthèse réagissent de manière attendue avec ces anticorps monoclonaux et miment donc les antigènes qui présentent tous un grand intérêt en physiopathologie. 2) Oligomannosides de synthèse mimant les activités antigéniques des oligomannosides naturels de levures du genre Saccharomyces. Il a été montré qu'un des épitopes majeurs vis à vis desquels était dirigée la réponse ASCA des patients atteints de la maladie de Crohn était un mannotétraose de formule Man a-1,3 Man a-1,2 Mana-1,2 Man (Sendid, B. et al., 1996, Clin. Diagn. Lab. Immunol. 3:219-26 ; Young, M. et al., 1998, Glycoconj. J. 15 :815-22) a) Anticorps polyclonaux.animaux. Selon les travaux immunochimiques ayant porté sur les sérums Iatron cette structure devrait réagir avec le Facteur 34 (Suzuki, S. et al., 1997, Curr. Top. Med. Mycol. 8 :57-70). La figure 8 montre que les résultats observés correspondent aux résultats attendus. b) Anticorps de patients. La figure 9 rapporte que l'utilisation du pool de sérums de patients, qui sert à standardiser le test ASCA, montre que ces anticorps se fixent à selon une réaction dépendante de la dose d'antigène de synthèse utilisée pour sensibiliser les plaques. Exemple 7 : Inhibition de la colonisation dans un modèle de candidose vaginale expérimentale de la rate (F. de Bernardis et al. Infection and Immunity 1998, 66 : 3317-3325). Des rates ovarectomisées sont maintenues en pseudo-oestrus par injection sous-cutanée de 0,5 mg de benzoate d'oestradiol tous les 2 jours pendant toute la durée des expériences. Les animaux sont inoculés avec 0,1 mL d'une solution à 107 levures. La cinétique de l'infection est suivie en déterminat le nombre de levures présentes dans les sécrétions vaginales. 1 L de sécrétions sont prélevées à l'aide d'une anse en plastique calibrée, étalés sur boite de sabouraud gélosé plus antibiotiques, les unités formant colonies sont numérées après 48h d'incubation à 28 C. Le graphe de la figure 10 rapporte les résultats observés sur 4 séries de 5 rates chacune. 1 : le (3-1,2 mamnotétraose (lOOug) a été administré 1 heure avant inoculation. 2 : 1 heure après inoculation.3 :lh, 24h et 48h après inoculation. REVENDICATIONS 1) Oligomannoside produit par synthèse chimique, homologue à un oligomannoside de la paroi d'un organisme infectieux ou pathogène, ou un dérivé de celuici. 2) Oligomannoside de synthèse selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il est homologue à un oligomannoside de la paroi d'une levure, d'un champignon, d'un virus, d'une bactérie dont l'enveloppe cellulaire contient des oligomannosides. 3) Oligomannoside de synthèse selon l'une des revendications 1 ou 2, caractérisé en ce qu'il est homologue à un oligomannoside de l'enveloppe cellulaire de Candida albicans ou Saccharomyces cerevisiae. 4) Oligomannoside de synthèse selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce que un de ces groupements fonctionnels est substitué par un groupe marqueur ou un groupe connecteur. 5) Oligomannoside de synthèse selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce qu'il répond à la formule suivante : [Mana(1-3 ]p[Mana(l-2)]q[Manp(l-2)]r (oc ou P)Man-OR dans laquelle : - R représente un atome d'hydrogène, un alkyle en C1 à C20, et de préférence en C15 à C20, ou un groupe connecteur, éventuellement marqué, ou encore une substance capable de rendre l'oligomannoside immunogène, - p, q, et r sont des nombres entiers entre 0 et 19 et de préférence entre 0 et 11 et la somme de p+q+r est comprise entre 1 et 19 et de préférence entre 1 et 11, les trois parties du polymère [Mana(1- 3)]p[Mana(1-2)]q[Man(3(1-2)]r peuvent être inversées ou répétées. 6) Oligomannoside de synthèse selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce qu'il répond à la formule (I) suivante : dans laquelle R représente un atome d'hydrogène, un alkyle en Cl à C20, et de préférence en C15 à C20, ou un groupe connecteur, éventuellement marqué, ou encore une substance capable de rendre l'oligomannoside immunogène, ou un dérivé de celui-ci dont un ou plusieurs des groupes hydroxyles sont substitués. 7) Oligomannoside de synthèse selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce qu'il répond à la formule (II) suivante : dans laquelle R à la même signification que dans la formule (I). 8) Oligomannoside de synthèse selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce qu'il répond à la formule (III) suivante : dans laquelle R à la même signification que dans la formule (I). 9) Oligomannoside de synthèse selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce que le connecteur est un groupe chimique permettant de coupler, de préférence par covalence, un oligomannoside de synthèse sur un support comme une plaque de microtitration. 10) Oligomannoside de synthèse selon la revendication 9, caractérisé en ce que le connecteur est du type comportant une fonction acide carboxylique qui peut être activée pour le couplage sur une surface elle-même activée. 11) Procédé de préparation d'un oligomannoside de synthèse selon l'une quelconque des revendications 1 à 10, caractérisé en ce qu'il consiste à condenser des monosaccharides ou disaccharides protégés, de préférence, par condensation de dimannosides protégés selon une stratégie par dibloc. 12) Procédé selon la revendication 11, caractérisée en ce qu'il comprend : a) la préparation de diblocs dont : - l'un au moins des deux blocs est le bloc intermédiaire, où les fonctions hydroxyles libres de chaque monosaccharide sont substituées par un ou plusieurs groupes protecteurs identiques ou différents, sauf celle nécessaire à la condensation avec un autre dibloc qui est activée par un groupe partant, - l'un des deux blocs est le bloc terminal, où les fonctions hydroxyles libres de chaque monosaccharide sont substituées par un ou plusieurs groupes protecteurs identiques ou différents, sauf celle nécessaire à la condensation avec un autre dibloc, et éventuellement celle substituée par un groupe de liaison pour la fixation de l'oligomannoside sur un support, b) à condenser lesdits diblocs, puis à déproteger l'oligomannoside ainsi préparé. 13) Procédé selon la revendication 12, caractérisé en ce qu'à l'étape (a), on prépare au moins un dimannoside Mana(1-2)Man de formule (IV) suivante : dans laquelle : - R est un groupe protecteur permanent. - Ri est un groupe protecteur temporaire. - R2 est : dans le cas d'un bloc intermédiaire, un groupe partant et dans ce cas le bloc peut être associé au reste du polymère en a ou ss; dans le cas d'un bloc terminal, un groupe choisi parmi un groupe alkyle, benzyle, ou encore un connecteur, en a ou ss. 14) Procédé selon la revendication 12, caractérisé en ce qu'à l'étape (a), on prépare au moins un dimannosides Manss(1-2)Man de formule (V) suivante : dans laquelle : - R1 est un groupe protecteur temporaire; - R2 est : dans le cas d'un bloc intermédiaire, un groupe partant et dans ce cas le bloc peut être associé au reste du polymère en a ou P; dans le cas d'un bloc terminal, un groupe choisi parmi un groupe alkyle, benzyle, ou encore un connecteur, en a ou ss. 15) Procédé selon la revendication 12, caractérisé en ce qu'à l'étape (a), on prépare au moins dimannoside Man[alpha](1-3)Man de formule (VI) suivante : dans laquelle : - R est un groupe protecteur permanent, - Ri est un groupe protecteur temporaire, - R2 est : dans le cas d'un bloc intermédiaire, un groupe partant et dans ce cas le bloc peut être associé au reste du polymère en a, dans le cas d'un bloc terminal, un groupe choisi parmi un groupe alkyle, benzyle, ou encore un connecteur, en a ou ss. 16) Procédé de préparation d'un tétramanoside D-Man (3(1-2) D-Man (3(1-2) D-Man ss(1-2) D-Man de formule (I), caractérisé en ce que l'on condense deux blocs Manss(1- 2) de formule (V), dont l'un est un dibloc intermédiaire dans lequel R2 est un groupe partant, formant une liaison ss, et l'autre un dibloc terminal dans lequel R2 est un groupe-SPh. 17) Procédé de préparation d'un tétramanoside D-Manoc ( 1-2 ) D-Manoc ( 1-2 ) D-Mano ( 1-2 ) D-Man, de formule (II) selon la revendication 13, caractérisé en ce que l'on condense deux blocs Man[alpha](1-2)Man de formule (IV), dont l'un est un dibloc intermédiaire dans lequel R2 est un groupe partant, et l'autre un dibloc terminal dans lequel R2 est un groupe-SPh. 18) Procédé de préparation d'un tétramanoside D-Mana(1-3) D-Mana(1-2) D-Mana(l-2) D-Manoc ( 1-2 ) , de formule (III), caractérisé en ce que l'on condense un dibloc Mana(1-3)Man de formule (VI) et d'un dibloc Mana(l- 2)Man de formule (IV), le dibloc intermédiaire étant Mana(1-3)Man de formule (VI) dans lequel R2 est un groupe partant, et le dibloc terminal étant Mana(l-2)Man dans lequel R2 représente le groupe R défini dans la formule (III) . 19) Procédé de détection in vitro sur un échantillon d'un patient de la présence d'une infection par un organisme infectieux ou pathogène, notamment une levure, un champignon, un virus, une bactérie dont la membrane contient des oligomannosides, caractérisé en ce que l'on met en contact au moins un oligomannoside de synthèse selon l'une quelconque des revendications 1 à 10, avantageusement préalablement fixé sur un support solide, avec un échantillon biologique susceptible de contenir des anticorps dirigés contre l'organisme infectieux ou pathogène, puis l'on détecte la formation d'un complexe antigène-anticorps. 20) Procédé de détection spécifique d'une infection par C. albicans notamment pour le diagnostic des candidoses selon la revendication 19, caractérisé en ce que l'on met en contact l'un au moins des tetramannosides D- Man(1-2)D-Man(1-2)D-Man(1-2)D-Man de formule (I) et D- Mana(1-2)D-Man a(1-2)D-Mana(1-2)D-Man de formule (II) avec un échantillon biologique. 21) Procédé de détection spécifique d'une infection par S. cerevisiae notamment pour le diagnostic de la maladie de Crohn ou d'une hépatite virale, selon la revendication 19, caractérisé en ce que l'on met en contact le tetramannoside D-Man a(1-3) D-Man a(1-2) D-Man a(1-2) D-Man a (1-2) de formule (III) avec un échantillon biologique. 22) Un kit pour la mise en #uvre d'un procédé selon l'une quelconque des revendications 19 à 21, caractérisé en ce qu'il comprend au moins un oligomannoside de synthèse selon l'une quelconque des revendications 1 à 10, avantageusement fixé sur un support solide, des moyens pour détecter la formation de complexes antigène-anticorps, et éventuellement des réactif témoins. 23) Un conjugué formé d'un oligommanoside de synthèse selon l'une quelconque des revendications 1 à 10 couplé à une substance capable de rendre les sucres immunogènes . 24) Un anticorps polyclonal ou monoclonal dirigé contre un conjugué selon la revendication 23. 25) Composition pharmaceutique caractérisée en ce qu'elle comprend à titre d'agent actif au moins un conjugué selon la revendication 23 avantageusement associé dans la composition à un véhicule pharmaceutiquement acceptable. 26) Composition selon la revendication 25 pour être utilisée pour inhiber la colonisation par les agents infectieux ou pathogènes dont les membranes contiennent des oligomannosides.