Brevet FR2808803A1 — publié le 20011116

La présente invention concerne des cellules ES d'oiseau modifiées, exprimant spécifiquement un gène exogène lorsqu'elles possèdent un caractère pluripotent. L'invention concerne également un acide nucléique et un polypeptide exprimés spécifiquement dans les cellules d'oiseau pluripotentes, ainsi que des méthodes de détection du caractère pluripotent de cellules mettant en #uvre ces acide nucléique et polypeptide. Les cellules ES sont des cellules pluripotentes isolées d'embryon très précoce, qui sont capables de participer à la morphogenèse de tous les tissus incluant le tissu germinal, après leur transplantation dans des embryons hôtes. Ces cellules ont d'abord été isolées chez la souris où elles sont très largement utilisées pour la création d'animaux mutants portant des modifications très ciblées de leur génome. Des cellules ES ont été isolées et caractérisées chez les oiseaux (Pain et col. 1996). Ces cellules peuvent être utilisées pour modifier le patrimoine génétique du poulet (Etches et al. 1996, Pain et col. 1999). Un milieu de culture permettant de maintenir le caractère pluripotent de ces cellules d'oiseaux a fait l'objet de la demande de brevet WO 96/12793. La difficulté rencontrée par tous ceux qui veulent isoler des cellules ES en culture, concerne l'identification rapide de ces cellules et de leur caractère pluripotent. Plusieurs marqueurs cellulaires ont été utilisés comme l'expression d'une activité phosphatase alcaline (Strickland et col. 1980), l'expression d'épitopes antigéniques (Kemler et col. 1981, Solter et Knowles 1978), l'expression de protéines spécifiques comme OCT-3 (Rosner et col. 1990), l'expression d'une activité télomérase (Prowse et Greider 1995). Les protéines OCT-3, REX-1, UTF-1 entre autres n'ont été identifiées jusqu'à présent que chez la souris. La vérification ultime du caractère pluripotent repose sur l'analyse des potentialités morphogénétiques de ces cellules après leur greffe dans des embryons hôtes, ce qui représente un test très lourd. Une autre difficulté rencontrée avec la culture des cellules ES en culture comprend l'obtention de populations cellulaires d'un degré d'hétérogénéité faible et satisfaisant, et le problème du contrôle de la croissance en culture de cellules non- pluripotentes. En effet, un problème particulier associé à la présence continuelle de certains types cellulaires différenciés, c'est-à-dire que ces cellules sont capables d'éliminer les cellules ES de la culture en induisant leur différenciation ou leur mort cellulaire programmée. La présente invention se propose de simplifier l'identification du caractère pluripotent de cellules d'oiseaux en culture, par la divulgation d'une séquence nucléique (gène ens-I) exprimée spécifiquement et sélectivement par les cellules pluripotentes. Ainsi, la présente invention a pour objet un acide nucléique caractérisé en ce qu'il comprend une séquence nucléique choisie dans le groupe de séquences suivantes : a) SEQ ID N 1 ; b) la séquence d'un fragment d'au moins 15nucléotides consécutifs d'une séquence choisie parmi SEQ ID N 1 ; c) une séquence nucléique présentant un pourcentage d'identité d'au moins 80 %, après alignement optimal avec une séquence définie en a) ou b) ; d) une séquence nucléique s'hybridant dans des conditions de forte stringence avec une séquence nucléique définie en a) ou b) ; e) la séquence complémentaire ou la séquence d'ARN correspondant à une séquence telle que définie en a), b), c) ou d). La séquence d'acides nucléiques selon l'invention définie en c) présente un pourcentage d'identité d'au moins 80 % après alignement optimal avec une séquence telle que définie en a) ou b) ci-dessus, de préférence 90 %, de façon la plus préférée 98 %. Par acide nucléique, séquence nucléique ou d'acide nucléique, polynucléotide, oligonucléotide, séquence de polynucléotide, séquence nucléotidique, termes qui seront employés indifféremment dans la présente description, on entend désigner un enchaînement précis de nucléotides, modifiés ou non, permettant de définir un fragment ou une région d'un acide nucléique, comportant ou non des nucléotides non naturels, et pouvant correspondre aussi bien à un ADN double brin, un ADN simple brin que des produits de transcription desdits ADNs. Ainsi, les séquences nucléiques selon l'invention englobent également les PNA (Peptid Nucleic Acid), ou analogues. Il doit être compris que la présente invention ne concerne pas les séquences nucléotidiques dans leur environnement chromosomique naturel, c'est-à-dire à l'état naturel. Il s'agit de séquences qui ont été isolées et/ou purifiées, c'est-à-dire qu'elles ont été prélevées directement ou indirectement, par exemple par copie, leur environnement ayant été au moins partiellement modifié. On entend ainsi également désigner les acides nucléiques obtenus par synthèse chimique. Par pourcentage d'identité entre deux séquences d'acides nucléiques ou d'acides aminés au sens de la présente invention, on entend désigner un pourcentage de nucléotides ou de résidus d'acides aminés identiques entre les deux séquences à comparer, obtenu après le meilleur alignement, ce pourcentage étant purement statistique et les différences entre les deux séquences étant réparties au hasard et sur toute leur longueur. On entend désigner par "meilleur alignement" ou "alignement optimal", l'alignement pour lequel le pourcentage d'identité déterminé comme ci-après est le plus élevé. Les comparaisons de séquences entre deux séquences d'acides nucléiques ou d'acides aminés sont traditionnellement réalisées en comparant ces séquences après les avoir alignées de manière optimale, ladite comparaison étant réalisée par segment ou par fenêtre de comparaison pour identifier et comparer les régions locales de similarité de séquence. L'alignement optimal des séquences pour la comparaison peut être réalisé, outre manuellement, au moyen de l'algorithme d'homologie locale de Smith et Waterman (1981), au moyen de l'algorithme d'homologie locale de Neddleman et Wunsch (1970), au moyen de la méthode de recherche de similarité de Pearson et Lipman (1988), au moyen de logiciels informatiques utilisant ces algorithmes (GAP, BESTFIT, BLAST P, BLAST N, FASTA et TFASTA dans le Wisconsin Genetics Software Package, Genetics Computer Group, 575 Science Dr., Madison, WI). Afin d'obtenir l'alignement optimal, on utilise de préférence le programme BLAST, avec la matrice BLOSUM 62. On peut également utiliser les matrices PAM ou PAM250. Le pourcentage d'identité entre deux séquences d'acides nucléiques ou d'acides aminés est déterminé en comparant ces deux séquences alignées de manière optimale, la séquence d'acides nucléiques ou d'acides aminés à comparer pouvant comprendre des additions ou des délétions par rapport à la séquence de référence pour un alignement optimal entre ces deux séquences. Le pourcentage d'identité est calculé en déterminant le nombre de positions identiques pour lesquelles le nucléotide ou le résidu d'acide aminé est identique entre les deux séquences, en divisant ce nombre de positions identiques par le nombre total de positions comparées et en multipliant le résultat obtenu par 100 pour obtenir le pourcentage d'identité entre ces deux séquences. Par séquences nucléiques présentant un pourcentage d'identité d'au moins 80 %, de préférence 90 %, de façon plus préférée 98 %, après alignement optimal avec une séquence de référence, on entend désigner les séquences nucléiques présentant, par rapport à la séquence nucléique de référence, certaines modifications comme en particulier une délétion, une troncation, un allongement, une fusion chimérique, et/ou une substitution, notamment ponctuelle, et dont la séquence nucléique présente au moins 80 %, de préférence 90 %, de façon plus préférée 98 %, d'identité après alignement optimal avec la séquence nucléique de référence. Il s'agit de préférence de séquences dont les séquences complémentaires sont susceptibles de s'hybrider spécifiquement avec la séquence SEQ ID N 1 de l'invention. De préférence, les conditions d'hybridation spécifiques ou de forte stringence seront telles qu'elles assurent au moins 80 %, de préférence 90 %, de façon plus préférée 98 % d'identité après alignement optimal entre l'une des deux séquences et la séquence complémentaire de l'autre. Une hybridation dans des conditions de forte stringence signifie que les conditions de température et de force ionique sont choisies de telle manière qu'elles permettent le maintien de l'hybridation entre deux fragments d'ADN complémentaires. A titre illustratif, des conditions de forte stringence de l'étape d'hybridation aux fins de définir les fragments polynucléotidiques décrits ci-dessus, sont avantageusement les suivantes. L'hybridation ADN-ADN ou ADN-ARN est réalisée en deux étapes : (1) préhybridation à 42 C pendant 3 heures en tampon phosphate (20 mM, pH 7,5) contenant 5 x SSC (1 x SSC correspond à une solution 0,15 M NaCl + 0,015 M citrate de sodium), 50 % de formamide, 7 % de sodium dodécyl sulfate (SDS), 10 x Denhardt's, 5 % de dextran sulfate et 1 % d'ADN de sperme de saumon ; (2) hybridation proprement dite pendant 20 heures à une température dépendant de la taille de la sonde (i.e. : 42 C, pour une sonde de taille > 100 nucléotides) suivie de 2 lavages de 20 minutes à 20 C en 2 x SSC + 2 % SDS, 1 lavage de 20 minutes à 20 C en 0,1 x SSC + 0,1 % SDS. Le dernier lavage est pratiqué en 0,1x SSC + 0,1 % SDS pendant 30 minutes à 60 C pour une sonde de taille > 100 nucléotides. Les conditions d'hybridation de forte stringence décrites ci-dessus pour un polynucléotide de taille définie, peuvent être adaptées par l'homme du métier pour des oligonucléotides de taille plus grande ou plus petite, selon l'enseignement de Sambrook et al., 1989. Parmi les séquences nucléiques présentant un pourcentage d'identité d'au moins 80 %, de préférence 90 %, de façon plus préférée 98 %, après alignement optimal avec la séquence selon l'invention, on préfère également les séquences nucléiques variantes de SEQ ID N 1, ou de ses fragments, c'est-à-dire l'ensemble des séquences nucléiques correspondant à des variants alléliques, c'est-à-dire des variations individuelles de la séquence SEQ ID N 1. Ces séquences mutées naturelles correspondent à des polymorphismes présents chez les oiseaux, en particulier chez les galliformes. De préférence, la présente invention concerne les séquences nucléiques variantes dans lesquelles les mutations conduisent à une modification de la séquence d'acides aminés du polypeptide, ou de ses fragments, codés par la séquence normale de SEQ ID N 1. On entend également désigner par séquence nucléique variante tout ARN ou ADNc résultant d'une mutation et/ou variation d'un site d'épissage de la séquence nucléique génomique dont l'ADNc a pour séquence SEQ ID N 1. L'invention concerne de préférence un acide nucléique purifié ou isolé selon la présente invention, caractérisé en ce qu'il comprend ou est constitué de la séquence SEQ ID N 1, de sa séquence complémentaire ou de la séquence de l'ARN correspondant à SEQ ID N 1. Les amorces ou sondes, caractérisées en ce qu'elles comprennent une séquence d'un acide nucléique selon l'invention, font également partie de l'invention. Ainsi, la présente invention concerne également les amorces ou les sondes selon l'invention qui peuvent permettre en particulier de mettre en évidence ou de discriminer les séquences nucléiques variantes, ou d'identifier la séquence génomique du gène dont l'ADNc est représenté par SEQ ID N 1, en utilisant notamment une méthode d'amplification telle que la méthode PCR, ou une méthode apparentée. L'invention concerne également l'utilisation d'une séquence d'acide nucléique selon l'invention comme sonde ou amorce, pour la détection, l'identification, le dosage et/ou l'amplification de séquences d'acide nucléique. L'invention concerne également l'utilisation d'une séquence d'acide nucléique selon l'invention comme oligonucléotide sens ou antisens. Selon l'invention, les polynucléotides pouvant être utilisés comme sonde ou comme amorce dans des procédés de détection, d'identification, de dosage ou d'amplification de séquence nucléique, présentent une taille minimale de 15 bases, de préférence de 20 bases, ou mieux de 25 à 30 bases. Les sondes et amorces selon l'invention peuvent être marquées directement ou indirectement par un composé radioactif ou non radioactif par des méthodes bien connues de l'homme du métier, afin d'obtenir un signal détectable et/ou quantifiable. Les séquences de polynucléotides selon l'invention non marquées peuvent être utilisées directement comme sonde ou amorce. Les séquences sont généralement marquées pour obtenir des séquences utilisables pour de nombreuses applications. Le marquage des amorces ou des sondes selon l'invention est réalisé par des éléments radioactifs ou par des molécules non radioactives. Parmi les isotopes radioactifs utilisés, on peut citer le 32P, le 33P, le 35S, le 3H ou le 125I. Les entités non radioactives sont sélectionnées parmi les ligands tels la biotine, l'avidine, la streptavidine, la dioxygénine, les haptènes, les colorants, les agents luminescents tels que les agents radioluminescents, chémoluminescents, bioluminescents, fluorescents, phosphorescents. Les polynucléotides selon l'invention peuvent ainsi être utilisés comme amorce et/ou sonde dans des procédés mettant en oeuvre notamment la technique de PCR (amplification en chaîne par polymérase) (Rolfs et al., 1991). Cette technique nécessite le choix de paires d'amorces oligonucléotidiques encadrant le fragment qui doit être amplifié. On peut, par exemple, se référer à la technique décrite dans le brevet américain U.S. N 4,683,202. Les fragments amplifiés peuvent être identifiés, par exemple après une électrophorèse en gel d'agarose ou de polyacrylamide, ou après une technique chromatographique comme la filtration sur gel ou la chromatographie échangeuse d'ions, puis séquences. La spécificité de l'amplification peut être contrôlée en utilisant comme amorces les séquences nucléotidiques de polynucléotides de l'invention et comme matrices, des plasmides contenant ces séquences ou encore les produits d'amplification dérivés. Les fragments nucléotidiques amplifiés peuvent être utilisés comme réactifs dans des réactions d'hybridation afin de mettre en évidence la présence, dans un échantillon biologique, d'un acide nucléique cible de séquence complémentaire à celle desdits fragments nucléotidiques amplifiés. L'invention vise également les acides nucléiques susceptibles d'être obtenus par amplification à l'aide d'amorces selon l'invention. D'autres techniques d'amplification de l'acide nucléique cible peuvent être avantageusement employées comme alternative à la PCR (PCR-like) à l'aide de couple d'amorces de séquences nucléotidiques selon l'invention. Par PCR-like on entend désigner toutes les méthodes mettant en #uvre des reproductions directes ou indirectes des séquences d'acides nucléiques, ou bien dans lesquelles les systèmes de marquage ont été amplifiés, ces techniques sont bien entendu connues. En général il s'agit de l'amplification de l'ADN par une polymérase ; l'échantillon d'origine est un ARN il convient préalablement d'effectuer une transcription reverse. Il existe actuellement de très nombreux procédés permettant cette amplification, comme par exemple la technique SDA (Strand Displacement Amplification) ou technique d'amplification à déplacement de brin (Walker et al., 1992), la technique TAS (Transcription-based Amplification System) décrite par Kwoh et al. (1989), la technique 3SR (Self-Sustained Sequence Replication) décrite par Guatelli et al. (1990), la technique NASBA (Nucleic Acid Sequence Based Amplification) décrite par Kievitis et al. (1991), la technique TMA (Transcription Mediated Amplification), la technique LCR (Ligase Chain Reaction) décrite par Landegren et al. (1988), la technique de RCR (Repair Chain Reaction) décrite par Segev (1992), la technique CPR (Cycling Probe Reaction) décrite par Duck et al. (1990), la technique d'amplification à la Q-béta-réplicase décrite par Miele et al. (1983). Certaines de ces techniques ont depuis été perfectionnées. Dans le cas où le polynucléotide cible à détecter est un ARNm, on utilise avantageusement, préalablement à la mise en oeuvre d'une réaction d'amplification à l'aide des amorces selon l'invention ou à la mise en #uvre d'un procédé de détection à l'aide des sondes de l'invention, une enzyme de type transcriptase inverse afin d'obtenir un ADNc à partir de l'ARNm contenu dans l'échantillon biologique. L'ADNc obtenu servira alors de cible pour les amorces ou les sondes mises en oeuvre dans le procédé d'amplification ou de détection selon l'invention. La technique d'hybridation de sondes peut être réalisée de manières diverses (Matthews et al., 1988). La méthode la plus générale consiste à immobiliser l'acide nucléique extrait des cellules de différents tissus ou de cellules en culture sur un support (tels que la nitrocellulose, le nylon, le polystyrène) et à incuber, dans des conditions bien définies, l'acide nucléique cible immobilisé avec la sonde. Après l'hybridation, l'excès de sonde est éliminé et les molécules hybrides formées sont détectées par la méthode appropriée (mesure de la radioactivité, de la fluorescence ou de l'activité enzymatique liée à la sonde). Selon un autre mode de mise en #uvre des sondes nucléiques selon l'invention, ces dernières peuvent être utilisées comme sondes de capture. Dans ce cas, une sonde, dite sonde de capture , est immobilisée sur un support et sert à capturer par hybridation spécifique l'acide nucléique cible obtenu à partir de l'échantillon biologique à tester et l'acide nucléique cible est ensuite détecté grâce à une seconde sonde, dite sonde de détection , marquée par un élément facilement détectable. Parmi les fragments d'acides nucléiques intéressants, il faut ainsi citer en particulier les oligonucléotides anti-sens, c'est-à-dire dont la structure assure, par hybridation avec la séquence cible, une inhibition de l'expression du produit correspondant. Il faut également citer les oligonucléotides sens qui, par interaction avec des protéines impliquées dans la régulation de l'expression du produit correspondant, induiront soit une inhibition, soit une activation de cette expression. Dans un mode de réalisation particulier de l'invention, l'acide nucléique selon l'invention code pour un polypeptide possédant un fragment continu d'au moins 200 acides aminés de la protéine SEQ ID N 2, de préférence 300 acides aminés, de la façon la plus préférée pour la protéine SEQ ID N 2. Ce polypeptide est également un objet de l'invention. En effet, la présente invention concerne également un polypeptide isolé caractérisé en ce qu'il comprend un polypeptide choisi parmi : a) un polypeptide de séquence SEQ ID N 2 ; b) un polypeptide variant d'un polypeptide de séquence SEQ ID N 2; c) un polypeptide homologue à un polypeptide défini en a) ou b), comportant au moins 80 % d'identité avec ledit polypeptide de a) ; d) un fragment d'au moins 15 acides aminés consécutifs d'un polypeptide défini en a) , b) ou c) ; e) un fragment biologiquement actif d'un polypeptide défini en a), b) ou c). Par polypeptide , on entend, au sens de la présente invention, désigner des protéines ou des peptides. Par fragment biologiquement actif , on entend un fragment possédant la même activité biologique que le fragment peptidique dont il est déduit, de préférence dans le même ordre de grandeur (à un facteur 10 près). Ainsi, les exemples montrent que la protéine IBD1 (SEQ ID N 2) a un rôle potentiel dans les phénomènes d'apoptose. Un fragment biologiquement actif de la protéine ENS-1 consiste donc en un polypeptide issu de SEQ ID N 2 qui pourrait posséder également un rôle dans le caractère de pluripotence des cellules ES. De préférence un polypeptide selon l'invention est un polypeptide constitué de la séquence SEQ ID N 2 (correspondant à la protéine codée par le gène ens-I) ou d'une séquence possédant au moins 80 % d'identité avec SEQ ID N 2 après alignement optimal. La séquence du polypeptide présente un pourcentage d'identité d'au moins 80 % après alignement optimal avec la séquence SEQ ID N 2, de préférence 90 %, de façon plus préférée 98 %. Par polypeptide dont la séquence d'acides aminés présentant un pourcentage d'identité d'au moins 80 %, de préférence 90 %, de façon plus préférée 98 %, après alignement optimal avec une séquence de référence, on entend désigner les polypeptides présentant certaines modifications par rapport au polypeptide de référence, comme en particulier une ou plusieurs délétions, troncations, un allongement, une fusion chimérique, et/ou une ou plusieurs substitutions. Parmi les polypeptides dont la séquence d'acides aminés présentant un pourcentage d'identité d'au moins 80 %, de préférence 90 %, de façon plus préférée 98 %, après alignement optimal avec la séquence SEQ ID N 2 ou avec l'un de ses fragments selon l'invention, on préfère les polypeptides variants codés par les séquences nucléiques variantes telles que précédemment définies, en particulier les polypeptides dont la séquence d'acides aminés présente au moins une mutation correspondant notamment à une troncation, délétion, substitution et/ou addition d'au moins un résidu d'acide aminé par rapport à la séquence SEQ ID N 2 ou avec l'un de ses fragments, de manière plus préférée les polypeptides variants présentant une mutation liée à une perte de caractère pluripotent des cellules les contenant. La présente invention concerne également les vecteurs de clonage et/ou d'expression comprenant un acide nucléique ou codant pour un polypeptide selon l'invention. Un tel vecteur peut également contenir les éléments nécessaires à l'expression et éventuellement à la sécretion du polypeptide dans une cellule hôte. Une telle cellule hôte est également un objet de l'invention. Les vecteurs caractérisés en ce qu'ils comportent une séquence de promoteur et/ou de régulateur selon l'invention, font également partie de l'invention. Lesdits vecteurs comportent de préférence un promoteur, des signaux d'initiation et de terminaison de la traduction, ainsi que des régions appropriées de régulation de la transcription. Ils doivent pouvoir être maintenus de façon stable dans la cellule et peuvent éventuellement posséder des signaux particuliers spécifiant la sécrétion de la protéine traduite. Ces différents signaux de contrôle sont choisis en fonction de l'hôte cellulaire utilisé. A cet effet, les séquences d'acide nucléique selon l'invention peuvent être insérées dans des vecteurs à réplication autonome au sein de l'hôte choisi, ou des vecteurs intégratifs de l'hôte choisi. Parmi les systèmes à réplication autonome, on utilise de préférence en fonction de la cellule hôte, des systèmes de type plasmidique ou viral, les vecteurs viraux pouvant notamment être des adénovirus (Perricaudet et al., 1992), des rétrovirus, des lentivirus, des poxvirus ou des virus herpétiques (Epstein et al., 1992). L'homme du métier connaît les technologies utilisables pour chacun de ces systèmes. Lorsque l'on souhaite l'intégration de la séquence dans les chromosomes de la cellule hôte, on peut utiliser par exemple des systèmes de type plasmidique ou viral ; de tels virus sont, par exemple, les rétrovirus (Temin, 1986), ou les AAV (Carter, 1993). Parmi les vecteurs non viraux, on préfère les polynucléotides nus tels que l'ADN nu ou l'ARN nu selon la technique développée par la société VICAL, les chromosomes artificiels de bactérie (BAC, bacterial artificial chromosome), les chromosomes artificiels de levure (YAC, yeast artificial chromosome) pour l'expression dans la levure, les chromosomes artificiels de souris (MAC, mouse artificial chromosome) pour l'expression dans les cellules murines et de manière préférée les chromosomes artificiels d'homme (HAC, human artificial chromosome) pour l'expression dans les cellules humaines. Dans les cellules d'oiseaux, on pourra utiliser comme vecteur d'expression des rétrovirus, des adénovirus aviaires, des poxvirus ou bien de l'ADN introduit par transfection ou électroporation. De tels vecteurs sont préparés selon les méthodes couramment utilisées par l'homme du métier, et les clones en résultant peuvent être introduits dans un hôte approprié par des méthodes standard, telles que par exemple la lipofection, l'électroporation, le choc thermique, la transformation après perméabilisation chimique de la membrane, la fusion cellulaire. L'invention comprend en outre les cellules hôtes, notamment les cellules eucaryotes et procaryotes, transformées par les vecteurs selon l'invention ainsi que les animaux transgéniques, de préférence les oiseaux ou mammifères, excepté l'Homme, comprenant une desdites cellules transformées selon l'invention. En particulier, l'invention comprend les animaux comprenant le gène ens-Iprésentant des marqueurs génétiques insérés dans celui-ci. Parmi les cellules utilisables aux sens de la présente invention, on peut citer les cellules bactériennes (Olins et Lee, 1993), mais aussi les cellules de levure (Buckholz, 1993), de même que les cellules animales, en particulier les cultures de cellules de mammifères (Edwards et Aruffo, 1993), et notamment les cellules d'ovaire de hamster chinois (CHO). On peut citer également les cellules d'insectes dans lesquelles on peut utiliser des procédés mettant par exemple en oeuvre des baculovirus (Luckow, 1993). Un hôte cellulaire préféré pour l'expression des protéines de l'invention est constitué par les cellules COS. Parmi les cellules d'oiseaux utilisables, on peut citer les cellules LMH d'hématome de poulet, les cellules immortalisées de caille QT6, les fibroblastes primaires ou immortalisés de poulet, de caille, de canard. L'invention concerne également une cellule hôte contenant un acide nucléique selon l'invention, caractérisée en ce qu'il s'agit d'une cellule ES d'oiseau modifiée en outre par introduction d'un gène exogène, ledit gène exogène étant uniquement et spécifiquement exprimé lorsque ladite cellule est maintenue à l'état pluripotent. De façon préférée, ledit gène exogène est un gène rapporteur, choisi parmi lacZ, GFP, luciférase, ROSA-p-geo, un gène de résistance à un antibiotique en particulier les gèns de résistance à la néomycine, l'hygromycine, la phléomycine, la puromycine). Ces cellules selon l'invention sont très utiles pour le criblage de composés permettant d'induire la différentiation de cellules pluripotentes, ou de milieu pour la culture de cellules tout en maintenant leur caractère pluripotent. Une autre cellule hôte d'intérêt selon l'invention consiste en une cellule d'oiseau contenant un acide nucléique selon l'invention, modifiée en outre par introduction d'un acide nucléique exogène, ledit acide nucléique exogène étant intégré dans ledit acide nucléique selon l'invention. Selon un mode de réalisation préférée de l'invention, ledit acide nucléique exogène est un gène d'intérêt thérapeutique, éventuellement précédé d'un promoteur spatio-temporelle et/ou de séquences terminatrices. Dans un autre mode de réalisation, ledit acide nucléique exogène est un marqueur génétique, qui peut être choisi parmi lacZ, GFP, phosphatase alcaline, thymidine kinase, gènes de résistance aux antibiotiques (parmi lesquels néomycine, hygromycine, phléomycine, puromycine). De façon préférée, les cellules d'oiseau hôtes précédemment décrites caractérisées en ce que ledit oiseau appartient à l'ordre des Galliformes, et est en particulier un poulet ou une caille. Dans ce cas, on intègre ledit gène rapporteur sous le contrôle du promoteur du gène ens-1 et/ou on intègre ledit acide nucléique exogène (gène d'intérêt thérapeutique et/ou marqueur génétique) dans le gène ens-l. Une cellule préférée selon l'invention est une cellule 9N2. 5, déposée à la Collection Nationale de Culture des Microorganismes le 11Mai 2000 sous le numéro d'ordre 1-2477. Les cellules selon l'invention sont de préférence des cellules ES pluripotentes, mais il doit être compris que l'invention concerne aussi les cellules d'oiseau différentiées, dérivant d'une cellule ES selon l'invention. on peut en particulier effectuer la différentiation de ces cellules en utilisant de l'acide rétinoïque, selon les enseignements de la demande de brevet WO 96/12793. L'invention concerne également les animaux transgéniques qui contiennent une cellule selon l'invention. Parmi les animaux selon l'invention, on préfère les oiseaux, en particulier les membres de l'ordre des Galliformes. Ces oiseaux transgéniques seront particulièrement intéressants pour l'étude de modifications dans le gène ens-I ou dans son promoteur. On peut également introduire un acide nucléique selon l'invention dans des oiseaux et d'autres animaux tels que les rongeurs, en particulier les souris, les rats ou les lapins, afin d'exprimer un polypeptide selon l'invention. Ces animaux transgéniques sont obtenus par exemple par recombinaison homologue sur cellules souches embryonnaires, transfert de ces cellules souches à des embryons, sélection des chimères affectées au niveau des lignées reproductrices, et croissance desdites chimères. Ils peuvent aussi être obtenus par microinjection d'ADN nu dans l'ovocyte fécondé. Les animaux transgéniques selon l'invention peuvent ainsi surexprimer le gène codant pour la protéine selon l'invention, ou leur gène homologue, ou exprimer ledit gène dans lequel est introduite une mutation ou bien exprimer un transgène comportant des portions du gène ens-1 associées à des séquences codantes destinées à produire une protéine. Alternativement, les oiseaux transgéniques selon l'invention peuvent être rendus déficients pour le gène codant pour le polypeptide de séquence SEQ ID N 2, ou un gènes homologues, par inactivation à l'aide du système LOXP/CRE recombinase (Rohlmann et al., 1996) ou de tout autre système d'inactivation de l'expression de ce gène. L'invention concerne aussi l'utilisation d'une séquence d'acide nucléique selon l'invention pour la synthèse de polypeptides recombinants. La méthode de production d'un polypeptide de l'invention sous forme recombinante, elle-même comprise dans la présente invention, se caractérise en ce que l'on cultive les cellules transformées, notamment les cellules ou mammifères de la présente invention, dans des conditions permettant l'expression d'un polypeptide recombinant codé par une séquence d'acide nucléique selon l'invention, et que l'on récupère ledit polypeptide recombinant. Les polypeptides recombinants, caractérisés en ce qu'ils sont susceptibles d'être obtenus par ladite méthode de production, font également partie de l'invention. Les polypeptides recombinants obtenus comme indiqué ci-dessus, peuvent aussi bien se présenter sous forme glycosylée que non glycosylée et peuvent présenter ou non la structure tertiaire naturelle. Les séquences des polypeptides recombinants peuvent être également modifiées afin d'améliorer leur solubilité, en particulier dans les solvants aqueux. De telles modifications sont connues de l'homme du métier comme par exemple la délétion de domaines hydrophobes ou la substitution d'acides aminés hydrophobes par des acides aminés hydrophiles. Ces polypeptides peuvent être produits à partir des séquences d'acide nucléique définies ci-dessus, selon les techniques de production de polypeptides recombinants connues de l'homme du métier. Dans ce cas, la séquence d'acide nucléique utilisée est placée sous le contrôle de signaux permettant son expression dans un hôte cellulaire. Un système efficace de production d'un polypeptide recombinant nécessite de disposer d'un vecteur et d'une cellule hôte selon l'invention. Ces cellules peuvent être obtenues par l'introduction dans des cellules hôtes d'une séquence nucléotidique insérée dans un vecteur tel que défini ci-dessus, puis la mise en culture desdites cellules dans des conditions permettant la réplication et/ou l'expression de la séquence nucléotidique transfectée. Les procédés utilisés pour la purification d'un polypeptide recombinant sont connus de l'homme du métier. Le polypeptide recombinant peut être purifié à partir de lysats et extraits cellulaires, du surnageant du milieu de culture, par des méthodes utilisées individuellement ou en combinaison, telles que le fractionnement, les méthodes de chromatographie, les techniques d'immunoaffinité à l'aide d'anticorps monoclonaux ou polyclonaux spécifiques, etc... Les polypeptides selon la présente invention peuvent aussi être obtenus par synthèse chimique en utilisant l'une des nombreuses synthèses peptidiques connues, par exemple les techniques mettant en #uvre des phases solides (voir notamment Stewart et al., 1984) ou des techniques utilisant des phases solides partielles, par condensation de fragments ou par une synthèse en solution classique. Les polypeptides obtenus par synthèse chimique et pouvant comporter des acides aminés non naturels correspondants sont également compris dans l'invention. Les anticorps mono- ou polyclonaux ou leurs fragments, anticorps chimériques ou immunoconjugués, caractérisés en ce qu'ils sont capables de reconnaître spécifiquement un polypeptide selon l'invention, font partie de l'invention. Des anticorps polyclonaux spécifiques peuvent être obtenus à partir d'un sérum d'un animal immunisé contre les polypeptides selon l'invention, notamment produit par recombinaison génétique ou par synthèse peptidique, selon les modes opératoires usuels. On note notamment l'intérêt d'anticorps reconnaissant de façon spécifique certains polypeptides, variants, ou leurs fragments immunogènes, selon l'invention. Les anticorps mono- ou polyclonaux ou leurs fragments, anticorps chimériques ou immunoconjugués, caractérisés en ce qu'ils sont capables de reconnaître spécifiquement le polypeptide de séquence SEQ ID N 2 sont particulièrement préférés. Les anticorps monoclonaux spécifiques peuvent être obtenus selon la méthode classique de culture d'hybridomes décrite par Kôhler et Milstein (1975). Les anticorps selon l'invention sont, par exemple, des anticorps chimériques, des anticorps humanisés, des fragments Fab ou F(ab')2. Ils peuvent également se présenter sous forme d'immunoconjugués ou d'anticorps marqués afin d'obtenir un signal détectable et/ou quantifiable. L'invention concerne également des méthodes pour la détection et/ou la purification d'un polypeptide selon l'invention, caractérisées en ce qu'elles mettent en #uvre un anticorps selon l'invention. L'invention comprend en outre des polypeptides purifiés, caractérisés en ce qu'ils sont obtenus par une méthode selon l'invention. Par ailleurs, outre leur utilisation pour la purification des polypeptides, les anticorps de l'invention, en particulier les anticorps monoclonaux, peuvent également être utilisés pour la détection de ces polypeptides dans un échantillon biologique. Ils constituent ainsi un moyen d'analyse immunocytochimique ou immunohistochimique de l'expression des polypeptides selon l'invention, notamment le polypeptide de séquence SEQ ID N 2 ou l'un de ses variants, sur des coupes de tissus spécifiques, par exemple par immunofluorescence, marquage à l'or, immunoconjugués enzymatiques. Ils peuvent permettre notamment de mettre en évidence l'expression de ces polypeptides dans les tissus ou prélèvements biologiques. Plus généralement, les anticorps de l'invention peuvent être avantageusement mis en #uvre dans toute situation où l'expression d'un polypeptide selon l'invention, normal ou muté, doit être observée. Ainsi, un procédé de détection d'un polypeptide selon l'invention dans un échantillon biologique, comprenant les étapes de mise en contact de l'échantillon biologique avec un anticorps selon l'invention et de mise en évidence du complexe antigène-anticorps formé est également un objet de l'invention, ainsi qu'une trousse permettant de mettre en oeuvre un tel procédé. Une telle trousse contient en particulier : a) un anticorps monoclonal ou polyclonal selon l'invention ; b) éventuellement des réactifs pour la constitution d'un milieu propice à la réaction immunologique ; c) les réactifs permettant la détection du complexe antigène- anticorps produit lors de la réaction immunologique. Ces anticorps peuvent être obtenus directement à partir de sérum humain, ou à partir d'animaux immunisés avec des polypeptides selon l'invention, puis humanisés . Les anticorps selon l'invention sont très utiles pour déterminer la présence du polypeptide SEQ ID N 2, et permettent ainsi de déterminer le caractère pluripotent d'une cellule ES d'oiseau. Un procédé de détermination du caractère pluripotent d'une cellule ES d'oiseau, caractérisé en ce qu'on détermine la présence d'un produit d'expression du gène correspondant à SEQ ID N 1ou de l'ARNm de SEQ ID N 1 est également un objet l'invention. En effet, l'invention divulgue la séquence du gène ens-l, qui est spécifiquement exprimé dans les cellules ES d'oiseau, en particulier des Galliformes, lorsque celles-ci sont pluripotentes. Les méthodes de détection de l'expression d'un gène appliquées à ce gène permettent donc de connaître rapidement la nature des cellules étudiées. En particulier, comme écrit ci-dessus, on peut détecter le produit d'expression du gène, en utilisant par exemple des anticorps selon l'invention, par Western Blot ou d'autres méthodes décrites précédemment. On peut aussi effectuer la détection de l'ARNm de SEQ ID N 1 par Northern Blot ou par RT-PCR en utilisant une sonde ou des amorces selon l' invention. La détection de l'expression de ce gène peut également être effectuée en utilisant une puce à ADN ou une puce à protéine, qui contiennent respectivement un acide nucléique ou un polypeptide selon l'invention. De telles puces sont également objets de l'invention. Une puce à protéines selon l'invention permet aussi l'étude des interactions entre les polypeptides selon l'invention et d'autres protéines ou des composés chimiques, et peut ainsi être utile pour le criblage de composés interagissant avec les polypeptides selon l'invention. Les Demanderesses ont montré que le gène ens-1 est trouvé uniquement dans les oiseaux de la famille des Galliformes. Ainsi, l'invention concerne également un procédé de classification de l'appartenance d'un oiseau à l'ordre des Galliformes, caractérisé en ce que l'on détecte, dans le génome dudit oiseau, la présence d'un acide nucléique selon l'invention, en particulier la présence de SEQ ID N 1. Cette propriété que le gène ens-I soit trouvé uniquement chez les Galliformes permet de définir un procédé de détermination de la présence d'un échantillon provenant d'un oiseau de l'ordre des Galliformes dans un échantillon alimentaire, caractérisé en ce que l'on détecte, dans ledit échantillon, la présence d'un acide nucléique selon l'invention, en particulier la présence de SEQ ID N 1. On peut détecter la présence d'un acide nucléique selon l'invention dans un échantillon biologique ou alimentaire, ou dans le génome d'un oiseau, par différentes manières. En particulier, on peut définir un procédé de détection et/ou de dosage d'un acide nucléique selon l'invention dans un échantillon biologique, alimentaire caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes : a) mise en contact dudit échantilloon avec un polynucléotide selon l'une des revendications 1 à 3, marqué ; b) détection et/ou dosage de l'hybride formé entre ledit polynucléotide et l'acide nucléique dudit échantillon. On peut également procéder à la détection et/ou au dosage d'un acide nucléique selon l'invention dans un échantillon biologique ou alimentaire, en effectuant une étape d'amplification des acides nucléiques dudit échantillon à l'aide d'amorces choisies parmi les acides nucléiques selon l'invention. Ainsi qu'il est démontré dans les exemples, l'acide nucléique selon l'invention ne sont exprimés dans les cellules ES d'oiseau que lorsque celles-ci possèdent un caractère pluripotent. Par ailleurs, les cellules ES modifiées selon l'invention, avec un gène rapporteur exprimé spécifiquement lorsqu'elles sont pluripotente, et en particulier les cellules 9N2. 5, peuvent être utilisés pour cribler des composés d'intérêt. En particulier, elles peuvent être utilisées dans un procédé de criblage d'une substance ou d'un milieu capables d'induire une différentiation de cellules pluripotentes, caractérisé en ce que qu'il comprend les étapes suivantes : a) maintien de cellules ES selon l'invention dans un milieu de culture permettant le maintien du phénotype pluripotent ; b) ajout de ladite substance dans ledit milieu de culture ou remplacement dudit milieu de culture par le milieu à tester ; c) détermination de l'induction de la différentiation par l'absence d'expression de la protéine SEQ ID N 2 ou du gène exogène. Ce procédé est de préférence mis en #uvre avec des cellules ES modifiées par insertion d'un gène rapporteur sous le contrôle du promoteur du gène ens-l, et l'on détecte l'absence d'expression dudit gène rapporteur. On utilise de préférence les cellules 9N2. 5, et l'on détecte l'absence d'expression de la p-galactosidase. On peut également utiliser les cellules selon l'invention pour cribler des substances capable de restaurer le caractère pluripotent de cellules différentiées, par un procédé comprenant les étapes suivantes : a) maintien de cellules différentiées dans un milieu de culture adéquat ; b) remplacement dudit milieu de culture par un milieu permettant de maintenir un phénotype pluripotent, et contenant ladite substance à tester ; c) détermination de la restauration du caractère pluripotent desdites cellules par l'expression de la protéine SEQ ID N 2 ou du gène exogène, dans lesdites cellules. Ce procédé est de nouveau avantageusement mise en oeuvre avec des cellules différentiées selon l'invention, modifiées par insertion d'un gène rapporteur dans le gène ens-1 ou sous contrôle de son promoteur. On utilise avantageusement des cellules 9N2. 5 différentiées, qui permettent la détection de l'expression de la ssgalactosidase. Les procédés décrits ci-dessus sont également objets de l'invention, ainsi que les milieux ou substances obtenus par lesdits procédés. II est extrêmement important de déterminer les gènes impliqués dans le caractère de pluripotence des cellules ES, ou de bénéficier d'un marqueur dudit caractère. En effet, du fait de la capacité pour ces cellules de participer à la morphogenèse de tous les tissus, une modification génétique de celles-ci permet d'assurer que le caractère recherché se retrouvera dans tous les tissus de l'animal formé. Par ailleurs, l'introduction de gènes exogènes au locus du gène ens-l, sous le contrôle de promoteurs à spécificité spatio-temporelle variables peut permettre l'obtention d'animaux transgéniques exprimant lesdits gènes dans des tissus ou à des stades de développement donnés. En effet, la spécificité du gène ens-1 étant qu'il ne s'exprime que si la cellule hôte possède le caractère pluripotent, l'introduction d'un acide nucléique exogène dans ce locus ne devrait pas gêner le développement de l'embryon. On peut donc introduire des gènes d'intérêt thérapeutique, par exemple codant pour des protéines thérapeutiques (hormones, facteurs de croissance, lymphokines), afin de pouvoir produire ces protéines lors du développement de l'embryon. Il peut en effet être très intéressant de produire des protéines thérapeutiques dans les #ufs, dont la coquille assure un environnement stérile. On peut également utiliser des cellules pluripotentes selon l'invention afin de les faire coloniser le tissu germinal d'animaux, en particulier d'oiseaux, de façon plus préférée de l'ordre des Galliformes, afin que des caractères génétiques particuliers puissent être transmis à leur descendance. Ceci permet l'amélioration de races industrielles de poulets, dindes, cailles ou autres d'une façon particulièrement intéressante économiquement. On peut aussi utiliser les composés choisis parmi a) un acide nucléique selon l'invention ; b) un polypeptide selon l'invention ; c) un vecteur selon l'invention ; d) une cellule selon l'invention; e) un anticorps selon l'invention ; f) une substance selon l'invention, à titre de médicament, afin de permettre, selon le cas, la restauration du caractère pluripotent de cellules d'oiseaux, ou au contraire d'induire la différentiation de cellules ES. La présente invention ouvre donc la voie à une meilleure caractérisation du caractère pluripotent des cellules ES, en fournissant la séquence d'un marqueur de ces cellules. Il reste toutefois à déterminer si ce gène est un facteur essentiel de ce caractère. Ainsi, l'introduction du gène ens-1 dans des cellules différentiées, par exemple sur un plasmide sous le contrôle d'un promoteur adapté, et l'étude de la restauration éventuelle du caractère pluripotent de ces cellules permettra de répondre à cette question. Parmi les promoteurs adaptés, on choisira un promoteur inductible, par exemple à un sucre, et l'on déterminera le caractère pluripotent des cellules lorsque l'on cesse d'induire l'expression du gène sur le plasmide. On peut également construire un plasmide qui mène à une excision du gène ens-I après un certain temps (par exemple en le plaçant entre deux séquences loxP, et en introduisant un second plasmide codant pour la recombinase Cre). Pour déterminer le caractère pluripotent des cellules, il peut être avantageux d'utiliser les cellules 9N2. 5 selon l'invention, et de rechercher l'expression de la ss-galactosidase après introduction du plasmide codant pour ens-l. S'il est possible de déterminer que le gène ens-1 est inducteur du caractère pluripotent des cellules, on peut mettre en #uvre un procédé de restauration dudit caractère (également objet de l'invention), caractérisé en ce que l'on exprime le gène ens-1 dans des cellules différentiées. On peut utiliser les méthodes décrites cidessus, en y apportant certaines améliorations connues de l'homme du métier. Les exemples ci-dessous permettent d'illustrer l'invention, et ne doivent pas être considérés comme limitant l'invention. DESCRIPTION DES FIGURES Figure 1 : structure du vecteur ROSA-p-geo utilisé pour transformer les cellules ES. Figure 2 : analyse de l'expression du transcrit ROSA-p-geo par RT-PCR dans les cellules 9N2.5 lors de l'induction de la différentiation par l'acide rétinoïque (+RA), le DMSO (+DMSO) ou les deux simultanément (+RA+DMSO). Le milieu contrôle ne contient aucun facteur inducteur. Figure 3 : analyse de l'expression du transcrit ROSA-p-geo par Northern Blot lors de l'induction de la différentiation par l'acide rétinoïque. Le Blot est hybridé avec une sonde LacZ. Figure 4 : analyse de l'expression du transgène ROSA-p-geo par révélation de l'activité p-galactosidase dans des embryons chimères pour les cellules 9N2. 5. Figure 5 : analyse par PCR de la présence du transgène ROSA-p-geo dans les embryons chimères. De l'ADN a été extrait, soit de cellules 9N2. 5, soit d'embryon chimère âgé de 48 heures ou de 4 jours, résultant de la transplantation de cellules 9N2. 5, soit d'embryon contrôle de 48 heures ou 4 jours. Figure 6 : détection par Southern Blot de la présence du transgène ROSA-p-geo dans l'ADN génomique des cellules 9N2. 5 après digestion par EcoRI (E) ou Dral (D). Figure 7 : détection par Northern Blot de la présence d'un transcrit comportant le transgène ROSA-p-geo, par hybridation avec une sonde Lac Z. Figure 8 : A. analyse par Northern Blot de l'expression du gène ens-Idans des cellules ES normales de poulet et dans les cellules 9N2. 5, après hybridation par les sondes CI, SIet S2. B. structure de l'ADN complémentaire du gène ens-1. (RS = séquences répétées, ORF = cadre de lecture). Les flèches représentent les sondes CI, SI et S2 utilisées pour l'hybridation. Figure 9 : analyse par Northern Blot de l'expression des transcrits ens-1 dans les cellules souches embryonnaires normales de poulet, dans les cellules 9N2. 5, dans l'embryon de poulet à différents stades de développement et dans différents organes de poussin. Les ARN polyA+ isolés à partir des ARN totaux ont été hybridés sur les blots avec les sondes Clou SI, ou avec une sonde contrôle GAPDH. Figure 10 : analyse de l'expression du transcrit ens-1 dans l'embryon de poulet par hybridation in situ. Figure11 : Amplification par PCR réalisé sur l'ADN génomique de différentes espèces aviaires avec les amorces ensSI (SEQ ID N 14) et ens1 AS 1 (SEQ ID N 15). EXEMPLES Exemple 1 : d'une cellule ES de poulet renfermant un marqueur génétique de la pluripotence. Afin d'identifier un gène spécifiquement exprimé dans les cellules ES pluripotentes la stratégie dite de piégeage de gène (gène trap) a été suivie. Cette stratégie consiste à introduire, dans le génome des cellules ES, un gène marqueur qui comporte une séquence codante exogène mais qui est dépourvu de promoteur propre. L'insertion aléatoire de ce marqueur dans le génome de la cellule conduira dans certains cas à placer ce gène exogène en aval d'un promoteur propre du génome cellulaire. Le gène exogène adopte, dans cette configuration, une régulation d'expression très similaire sinon identique à celle du gène dans lequel il est inséré. Le suivi de l'expression du gène marqueur dans les cellules ainsi modifiées renseigne alors sur le patron d'expression du gène cellulaire ainsi marqué . Comme système de piégeage de gène les inventeurs ont utilisé celui qui exploite les propriétés du vecteur ROSA-p-geo décrit par Friedrich et Soriano (1991). Ce système est constitué d'un plasmide qui porte les deux gènes respectivement LacZ et NeoRfusionnés l'un à l'autre dans l'ordre 5'-3'. Ce gène fusion code pour une protéine unique LacZ-Neo qui confère aux cellules qui la produisent à la fois la résistance au G418 et l'activité p-galactosidase. La structure du plasmide est présentée sur la figure 1. Ce plasmide a été coupé par l'enzyme Dral qui induit sa linéarisation. Le plasmide linéarisé a été introduit dans des cellules ES de poulet par la technique d'électroporation. Pour cela une culture de cellules ES de poulet entretenue dans les conditions décrites dans Pain et col. (1996) a été utilisée. Les cellules ES furent recueillies à partir de boîtes de culture par traitement ménagé à la pronase. Les cellules en suspension ont été lavées et mises en suspension dans du milieu de Glasgow à la concentration de 5 x 106 dans 0,8 ml. Dix microgrammes de plasmide linéarisé ont été ajoutés à la suspension cellulaire qui a été maintenue pendant 10 minutes à 4 C. Ensuite la suspension a été soumise à un traitement d'électroporation consistant en 2 stimulations électriques dans les conditions suivantes : V, 500 mF dans une cuve de 1 mm d'épaisseur dans un appareil BioRad electroporator. Les cellules ont ensuite été maintenues pendant 10 minutes à 4 C avant d'être ensemencées en culture selon le procédé décrit dans Pain et col. (1996), incorporé par référence. Trente six heures plus tard les cultures ont été additionnées de G418 à la concentration de 250 g/ml. Le milieu de culture contenant le G418 a ensuite été changé tous les jours pendant 4 jours, puis tous les deux jours. Des clones de cellules ES résistantes au G418 sont devenus apparents après le sixième jour. Ils furent prélevés individuellement entre 8 et 10 jours après le début de la culture. Ces clones furent ensemencés individuellement dans du milieu de culture frais contenant du G418 afin d'être amplifiés. Ils furent ensuite conservés dans de l'azote liquide. Dans les cellules électroporées, l'expression du marqueur ROSA-p-geo a été analysée par l'identification in situ de l'activité p-galactosidase selon le procédé suivant. Les cellules en suspension furent fixées à 4 C pendant une durée de 30 minutes dans un mélange à base de PBS contenant 1 % de formaldéhyde, 0,2 % de glutaraldéhyde et 0,02 % de Nonidet P-40. Les cellules furent ensuite incubées à 37 C pendant une durée qui pouvait aller de 1 à 24 heures dans du PBS contenant 1 mg/ml de 5-bromo-4-chloro-3-indolyl P-D-galactopuranoside, 5 mM de K3Fe (CN) 6, 5 mM de K4Fe (CN) 6, 2 mM de MgCl2 et 0,02 % de Nonidet P-40. Les cellules exprimant le marqueur p-galactosidase étaient colorées en bleu. L'objectif était d'identifier des cellules ES dans lesquelles le vecteur ROSA- p-geo serait inséré en aval d'un promoteur qui ne fonctionnerait que dans les cellules ES lorsque celles-ci sont pluripotentes. Après caractérisation de plusieurs clones, un clone a été retenu, appelé 9N2. 5, qui ne présentait la réaction positive du test p-galactosidase que lorsque les cellules étaient maintenues dans les conditions de culture assurant la persistance du caractère pluripotent des cellules telles que décrites dans Pain et col. (1996). La positivité du test fut perdue lorsque les cellules 9N2. 5 furent induites dans la différenciation (voir plus loin). Le clone 9N2. 5 a été amplifié en culture in vitro puis stocké sous forme viable par congélation dans l'azote liquide. Exemple 2 : des cellules 9N2. 5. Les cellules 9N2. 5 ont été maintenues dans les conditions de culture décrites par Pain et col. (1996), pour les cellules ES de poulet. Dans ces conditions il a été vérifié que les cellules 9N2. 5 présentaient la morphologie, l'activité télomérase et les épitopes antigéniques caractéristiques des cellules ES de poulet tels que décrits par Pain et col.. Ces cellules sont également capables de former des corps embryoïdes, comme les cellules parentales. L'électroporation, la sélection dans le G418 et l'amplification ultérieure de ces cellules n'avaient donc pas altéré leurs caractères de cellules ES. Pour analyser l'expression du marqueur ROSA-p-geo dans les cellules différenciées, les cellules 9N2. 5 furent induites dans la différenciation selon les procédés décrits dans Pain et al. Ces cellules furent cultivées en absence de cellules nourricières, en absence de LIF et de cytokines et en présence soit d'acide rétinoïque à la concentration de 5 x 10-6 M, soit de DMSO à la concentration de 1 %. Dans certaines cultures, l'acide rétinoïque et le DMSO furent ajoutés simultanément. Dans les milieux induisant la différenciation des cellules ES on a pu observer l'apparition de cellules différenciées identiques à celles qui furent décrites initialement par Pain et col. (1996) dans les mêmes conditions. Après 4 jours de culture dans les milieux de différenciation, les cellules devinrent complètement négatives pour le test de l'activité p-galactosidase. Afin de confirmer l'absence d'expression du transgène ROSA-p-geo, son expression fut suivie soit par la recherche des ARNm LacZ par la technique de RT-PCR. Pour cela, les amorces SEQ ID N 3 et SEQ ID N 4 furent utilisées : Comme il est montré sur la figure 2, la quantité d'ARN produite par le transgène ROSA-p-geo ne change pas durant 5 jours de culture des cellules dans le milieu de culture qui maintient la pluripotence (milieu ES). Par contre dans les milieux de culture de différenciation contenant soit l'acide rétinoïque seul, soit le DMSO, soit l'acide rétinoïque et le DMSO, la quantité d'ARNm ROSA-p-geo diminua très fortement après 4 jours de culture. Pour confirmation, les ARNm ROSA-p-geo furent aussi analysés par la technique de Northern blot en utilisant une sonde marquée spécifique de la séquence LacZ. Comme cela est montré dans la figure 3, en présence d'acide rétinoïque, les ARNm LacZ devinrent quasiment indétectables après deux jours de culture alors que leur expression était maintenue dans le milieu de culture dépourvu d'acide rétinoïque. Conclusion Les cellules 9N2. 5 expriment sélectivement le transgène ROSA-p-geo lorsqu'elles sont maintenues à l'état pluripotent. L'expression du transgène cesse très rapidement après l'induction de la différenciation de ces cellules en culture. Exemple 3 : Test de l'expression du transgène ROSA-ss-geo dans les cellules 9N2.5 in vivo. Afin d'analyser les potentialités de développement des cellules 9N2. 5 et l'expression du transgène ROSA-p-geo dans un embryon in vivo, les cellules 9N2. 5 ont été greffées dans des embryons de poulet au stade X selon l'échelle de EyalGiladi et Kochav (1976) (échelle E-G&K) selon le protocole décrit par Pain et col. (1996). La présence des descendants des cellules injectées a été recherchée dans les embryons à différents stades de développement après la greffe, par le test de la ssgalactosidase. Comme cela est illustré sur la figure 4, des amas de cellules positives pour la P-galactosidase furent détectés dans l'épiblaste des embryons ayant atteint le stade XIII dans les embryons injectés. Ces cellules positives ne furent identifiées que dans l'épiblaste de l'aire pellucide. Plus tard au cours du développement, au stade de la gastrulation, stade 5 selon l'échelle de Hamburger et Hamilton (H&H), des cellules positives ne furent retrouvées que dans la ligne primitive et le croissant germinal extra-embryonnaire. Dans la ligne primitive, les cellules furent identifiées dans quelques amas pour la plupart localisés dans le n#ud de Hensen. Au stade 13 (échelle H&H), des cellules positives ne furent trouvées que dans le sinus rhomboidal qui correspond à la plaque neurale encore ouverte dans la partie caudale de l'embryon. Plus tard au cours du développement embryonnaire, des cellules positives n'ont été retrouvées que sous forme de très rares cellules isolées dans certains tissus d'origine nerveuse, ainsi que dans les ébauches gonadiques. Afin de vérifier si, malgré la négativité de la réaction P-galactosidase, des descendants des cellules 9N2. 5 avaient bien colonisé en nombre les tissus d'embryons âgés, la présence du transgène ROSA--geo a été recherchée par PCR dans de l'ADN extrait à partir d'embryon complet âgé de 2 ou 4 jours de développement. Comme cela est montré sur la figure 5, une bande caractéristique du transgène ROSA-p-geo a pu être détectée, démontrant que les cellules descendantes des cellules 9N2. 5 greffées étaient présentes au moins 4 jours après la greffe. Quelques embryons injectés avec des cellules 9N2. 5 ont achevé leur développement et ont donné naissance à des poussins. La recherche des séquences du transgène ROSA-p-geo a été entreprise sur l'ADN isolé de divers tissus par la technique de PCR. Ainsi chez deux poussins qui ont été analysés on a révélé la présence du transgène dans la peau, le gésier, le foie. Tous ces tissus ne présentaient pas d'activité ss-galactosidase ce qui démontre que les transgènes étaient présents dans des cellules différenciées issues des cellules 9N2. 5 greffées. Conclusion Les cellules 9N2. 5 sont donc capables de coloniser un embryon hôte et de s'y développer. Cependant l'expression du transgène ROSA-ss-geo reste limitée aux cellules très tôt après la transplantation dans l'embryon ainsi qu'à de rares cellules présentent dans quelques tissus comme les gonades ou le système nerveux. Compte tenu des observations effectuées sur les cellules 9N2. 5 en culture, on peut raisonnablement imaginer que l'expression du transgène ROSA-p-geo dans les cellules in vivo se limite aux cellules qui ne se sont pas encore engagées dans la différenciation. L'ensemble de ces données obtenues in vitro et in vivo à partir des cellules 9N2. 5 conduit à supposer que le transgène ROSA-p-geo est inséré dans un locus du génome de ces cellules dont l'activité transcriptionnelle est spécifique des cellules ES à l'état pluripotent. Exemple 4 : Prolifération des cellules 9N2-5 in vivo. Afin d'analyser si les cellules 9N2. 5 étaient capables de proliférer dans certains compartiments de l'embryon, deux embryons injectés ont été prélevés après 7 jours d'incubation. Les embryons ont été arbitrairement coupés en 3 parties : la tête, le tronc en incluant les ébauches des membres supérieurs, la queue en incluant les ébauches des membres inférieurs. Ces parties ont été dissociées dans la pronase et la suspension cellulaire ensemencée en culture selon le procédé de culture décrit par Pain et col. ( 1996). Une sélection au G418 à 250 g/ml fut réalisée pendant 6 jours. Il apparut quelques foyers de cellules résistantes dans toutes les cultures, mais la fréquence de ces foyers étaient beaucoup plus élevée dans les cultures ensemencées à partir de la partie postérieure des embryons. Les cellules résistantes au G418, issues de cette culture furent repiquées pour être amplifiées, 7 jours après l'ensemencement initial. Une partie de ces cultures parallèles fut testée positivement pour l'expression de l'activité p-galactosidase. Cette approche a permis, pour un des 2 embryons testés, de maintenir, d'amplifier et même de congeler, sous forme viable, des cellules positives pour la p-galactosidase, résistantes au G418 et qui présentaient une morphologie identique à celle des cellules 9N2. 5 injectées. Les cellules issues du deuxième embryon, bien que positives pour l'activité p-galactosidase, n'ont proliféré que lentement et n'ont pas pu être suffisamment amplifiées. Conclusion Ces résultats montrent donc que certaines cellules 9N2. 5 sont capables de se maintenir sous forme de cellules ES dans certaines régions de l'embryon. Ces cellules correspondent vraisemblablement aux rares cellules positives pour la ssgalactosidase identifiées sur les coupes d'embryons injectés avec les cellules 9N2.5 (voir ci-dessus). Au regard de leur localisation dans la partie postérieure de l'embryon, on peut suggérer que certaines des cellules qui conservent les caractères des cellules 9N2.5 in vivo correspondent à des cellules EG telles que décrites chez la souris et chez l'homme (Matsui et al. 1992, Shamblott et al. 1998). Les cellules EG sont des cellules précurseurs des cellules germinales qui possèdent des propriétés de pluripotence et des caractères cytologiques très voisins de ceux des cellules ES. Exemple 5 :Utilisation des cellules 9N2. 5 pour un criblage de substances Les cellules 9N2. 5 présentent une expression de la P-galactosidase forte quand elles sont dans un état indifférencié. Cette expression est perdue lors d'une induction de différenciation. Cette propriété peut être mise à profit pour tester différentes molécules inductrices ou promotrices de la différenciation ou pour tester des molécules non inductrices. Les cellules 9N2. 5 peuvent ainsi être utilisées comme support de test pour identifier des lots de sérum appropriés à la culture de cellules ES ou bien à leur différenciation. Pour cela, les cellules sont ensemencées dans un milieu identique à celui employé pour maintenir les cellules parentales. Dans ce milieu, le sérum de référence est remplacé par les différents sera à tester, à différentes concentrations éventuellement. Les ensemencements sont réalisés à très faible densité (2 x 104 cellules par boîte de 35 mm) et les cellules cultivées pendant 4 jours. Les cellules sont alors fixées, colorées pour révéler l'activité ssgalactosidase et le nombre de foyers positifs estimé. Le nombre de foyers positifs est en relation directe avec la capacité du sérum à maintenir l'autorenouvellement des cellules ES. Cet exemple peut être étendu au test de substances diverses, naturelles ou de synthèse. Conclusion Les cellules 9N2. 5 peuvent être utilisées pour cribler des substances sur leur aptitude à induire l'autorenouvellement ou bien la différenciation de cellules ES en culture. Exemple 6 : Identification du locus d'intégration du transgène ROSA-ss-geo dans les cellules ES 9N2.5 Dans une première approche vers l'identification du locus d'intégration du transgène ROSA-p-geo dans les cellules 9N2. 5 une analyse de l'ADN génomique des cellules 9N2. 5 par la technique de Southern Blot a été effectuée. L'ADN de cellules 9N2. 5 fut digéré par l'enzyme de restriction EcoRI ou par l'enzyme Dral qui ne coupent chacune le transgène ROSA-p-geo qu'en un site unique. Après migration électrophorétique de l'ADN digéré, les filtres furent hybridés avec une sonde spécifique du fragment LacZ. Comme cela est montré sur la figure 6, une seule bande a été identifiée dans ces conditions dans chacune des digestions pratiquées. Aucune bande ne fut identifiée dans l'ADN de cellules ES normales de poulet ne contenant pas le transgène ROSA-p-geo. Ces résultats démontraient que, dans les cellules 9N2. 5, une seule copie du transgène ROSA-p-geo est intégrée. Dans un second temps, la taille de l'ARNm transcrit à partir du transgène a été analysé. De l'ARN de cellules 9N2. 5 a été analysé par Northern blot avec une sonde LacZ. Comme cela est montré sur la figure 7, un seul transcrit de taille 4,7 kb a été révélé. Ce transcrit n'est pas présent dans l'ARN de cellules ES normales. Compte tenu de la longueur attendue de la séquence qui doit être transcrite dans le transgène ROSA-p-geo, soit 3,9 kb, on doit imaginer que le transcrit révélé dans les cellules 9N2. 5 contient environ 0,8 kb de séquences issues du gène cellulaire dans lequel est inséré le transgène. Ces séquences cellulaires peuvent se situer sur l'ARNm soit en 5', soit en 3', soit être réparties des deux côtés de la séquence transcrite du transgène ROSA-p-geo. Afin de les rechercher en région 5', la technique 5'-RACE en utilisant le kit Marathon de la société Clontech a été mise en oeuvre. À partir d'ARN de cellules 9N2. 5, un brin d'ADN complémentaire fut synthétisé en utilisant une amorce spécifique de la région LacZ, amorce de séquence (SEQ ID N 5). Après synthèse du second brin complémentaire de ce premier brin, l'ADN complémentaire double brin fut lié à l'adaptateur fourni dans le kit Marathon dont la séquence est SEQ ID N 6. L'ensemble de la séquence fusionnée fut ensuite amplifié par la technique de PCR en utilisant les amorces SEQ ID N 7 et SEQ ID N 8. L'amplification fut réalisée sur une machine 2400 Perkin Elmer dans les conditions suivantes: 94 C pendant 30 secondes, puis 5 cycles à 94 C de 5 secondes chacun, puis 4 minutes à 72 C, puis 5 cycles à 94 C de 5 secondes chacun, puis 4 minutes à 70 C, puis 25 cycles à 94 C de 5 secondes chacun, puis 4 minutes à 68 C. Un produit d'amplification de 400 paires de bases fut identifié. Ce fragment appelé FI fut cloné dans un plasmide pour être amplifié, puis sa séquence exacte fut déterminée. Nous avons ensuite recherché des séquences situées en aval de la séquence FI sur l'ARNm transcrit dans les cellules ES en utilisant la technique de RT-PCR. Pour cela de l'ARN de cellules ES normales fut utilisé comme matrice pour synthétiser un ADN complémentaire par amorçage au moyen d'une amorce P3 de séquence SEQ ID N 9. L'ADN complémentaire monocaténaire fut ensuite amplifié par PCR au moyen des amorces SEQ ID N 10 qui correspond à la séquence 5' du fragment initialement amplifié par la technique 5'-RACE, et SEQ ID N 11. Un fragment appelé CIfut ainsi amplifié puis cloné dans un plasmide. La séquence exacte de CIfut déterminée (SEQ ID N 12). Afin de confirmer que la séquence CIest bien dans les ARNm qui portent aussi la séquence LacZ dans les cellules 9N2. 5, une amplification par RT-PCR a été effectuée sur les ARNm issus de ces cellules en utilisant les amorces respectives P4 (SEQ ID N 13), spécifique du fragment CI, et LacZB (SEQ ID N 8), spécifique de la séquence LacZ. Un fragment de 331 paires de bases fut identifié. La taille de ce fragment correspond à celle attendue ce qui indique que la séquence CI et la séquence LacZ se trouvent bien sur un même ARNm. La confirmation était ainsi apportée que la séquence CIdoit être spécifique du gène cellulaire dans lequel est inséré le transgène ROSA-p-geo. Ce gène a été appelé ens-1 (embryonic normal stem cell gène). Afin de vérifier que le gène ens-1 produit bien un ARN messager les ARN de cellules ES normales de poulet ont été analysés par la technique de Northern blot au moyen de la sonde CI. Comme cela est montré sur la figure 8.A, la sonde CI identifie un ARN majeur de taille voisine de 4,7 kb ainsi que deux ARN très faiblement marqués d'environ 10 kb et 2 kb respectivement. À partir de la séquence CI, le clonage de l'ARNm complet transcrit à partir du gène ens-1 a été entrepris. Pour cela une banque d'ADNc construite à partir d'ARN polyadénylés isolés de cellules ES de poulet a été criblée avec des sondes préparées à partir du fragment C 1. Un ADN complémentaire de 4,2 kpb a été isolé. Afin de vérifier si cet ADNc est bien représentatif de l'ARNm transcrit à partir du gène ens-l, deux sondes nucléotidiques ont été préparées, respectivement SI et S2, correspondant à deux fragments différents de cet ADNc situés en aval de la séquence CI. Ces deux sondes ont été utilisées pour identifier, par la technique de Northern blot, les ARN correspondants isolés de cellules ES normales de poulet. Comme cela est montré sur la figure 8.A, ces deux sondes identifient un ARN de taille voisine de 4,5 kb, identique à celle de l'ARN majoritaire identifié précédemment avec la sonde C1. Comme cela est montré plus loin le patron d'expression de cet ARN identifié avec les deux sondes SI et S2 est identique à celui de l'ARN majoritaire identifié avec la sonde CIdans les cellules ES normales. L'ensemble de ces données suggère très fortement que les sondes CI, SI et S2 reconnaissent le même ARNm ens-1 dans les cellules ES normales de poulet. La séquence de l'ARNm ens-1 est présentée dans SEQ ID N 1, et la structure de l'ADNc est présentée dans la figure 8. B. L'analyse de cette séquence révèle un cadre de lecture de grande longueur pouvant coder pour une protéine de 490 acides aminés dont la séquence est présentée par SEQ ID N 2. Il est à noter que la séquence CIest polymorphique et que celle obtenu à partir du clone d'ADNc, et présentée dans SEQ ID N 1, est légèrement différente de celle obtenue précédemment par 5'RACE (SEQ ID N 12). Afin de vérifier si le gène ens-I correspond bien au gène dans lequel est inséré le transgène ROSA-p-geo dans les cellules 9N2.5 le patron d'expression du gène ens-1 au cours du développement embryonnaire du poulet et au cours de la différenciation des cellules ES de poulet en culture a été analysé en utilisant la technique de Northern blot. Comme cela est montré dans la figure 9, la sonde Cl et la sonde SI identifient le même ARN de 4,5 kb dans les ARN extraits d'embryon de poulet normal de 48 heures. L'intensité du signal diminue fortement dans les ARN extraits d'embryons plus âgés, comme les embryons de 3 jours et de 4 jours. Le signal disparaît dans les ARN extraits d'embryons âgés de 7 jours ou de 18 jours. Il est nul dans les ARN extraits de divers tissus de poussin comme le foie, le muscle, le gésier, le cerveau, le c#ur, l'#il, l'os ou la peau. Afin de déterminer plus précisément le patron d'expression du gène ens-1 durant les premiers stades du développement de l'embryon de poulet, les ARNm ens-1 ont été recherchés par la technique d'hybridation in situ sur embryon total. Les résultats sont présentés sur la figure 10. Un signal très fort fut observé dans l'aire pellucide d'embryon aux stade X et XIII (échelle E-G&K). Dans les embryons au stade 2 (échelle H&H), le signal ne fut trouvé que dans l'aire pellucide avec une forte dominance dans la région de la ligne primitive. Au stade 5 (échelle H&H) le signal fut retrouvé dans le noeud de Hensen et dans la région rostrocaudale de la ligne primitive, ainsi que sous une forme très prononcée dans le croissant germinal en position antérieure de l'embryon. À des stades plus avancés du développement embryonnaire, aucun signal significatif ne fut détecté. Les mêmes patrons d'expression furent observés avec les sondes CI et SI. Conclusion Le gène ens-1 présente une expression spécifique des cellules ES de poulet indifférenciées et des stades très précoces de l'embryogenèse. L'expression du gène devient très faible voire indétectable après l'achèvement de la gastrulation. Le gène ens-1 constitue donc un marqueur très spécifique des cellules embryonnaires indifférenciées, que ces cellules soient présentes dans l'embryon, ou qu'elles soient maintenues dans cet état en culture in vitro. Le gène ens-1 est aussi spécifique des cellules du croissant germinal et donc des cellules précurseurs des gamètes. Exemple 7 : Conservation du gène ens-1 au cours de l'évolution Afin d'analyser le degré de conservation du gène ens-1 au cours de l'évolution une sonde spécifique du gène ens-1 de poulet a été utilisée pour hybrider de l'ADN génomique provenant de diverses especes animales par la technique du southem blot (non montré). La technique d'amplification de séquence nucléique par PCR entre deux amorces spécifiques du gène ens-1 (SEQ ID N 14 et SEQ ID N 15), en utilisant le protocole : 96 C 3 minutes, (96 C 30 s, 62 C 30s, 72 C 30s, 10 cycles), (96 C 30s, 57 C 30s, 72 C 30s, 10 cycles), (96 C 30s, 52 C 30s, 72 C 30s, 20 cycles), a également été utilisée. Les résultats présentés sur la figure 11montrent que des séquences homologues sont retrouvées uniquement dans l'ordre des galliformes (poulet, caille, dinde, faisan, perdrix rouge, perdrix grise). Il est à noter qu'aucune homologue à ens-1 n'est trouvé chez les mammifères (non montré) DEPOT DE MATERIEL BIOLOGIQUE La lignée cellulaire 9N2. 5 a été déposée le 11 Mai 2000 à la Collection Nationale de Cultures de Microorganismes (CNCM), 25 rue du Docteur Roux, 75724 Paris Cedex 15, France, selon les dispositions du Traité de Budapest, sous le numéro d'ordre 1-2477, et correspond à la lignée de cellules souches embryonnaires de poulet dans laquelle le transgène ROSA-p-geo linéarisé par DraI a été introduit par électroporation, et qui ont été isolées après sélection au G418, et pour leur activité p-galactosidase, ainsi que décrit dans l'exemple 1. Les cellules utilisables pour cultiver les cellules 9N2.5 (fibroblastes de souris, STO) ont également été déposées à la CNCM le 11 Mai 2000, sous le numéro SH-2477. Références Buckholz, (1993), Curr. Op. Biotechnology 4, 538. Carter, (1993) Curr. Op. Biotechnology 3,533. Duck et al. (1990), Biotechniques, 9,142. Edwards et Aruffo (1993), Curr. Op. Biotechnology, 4,558. Epstein (1992) Médecine/Sciences, 8,902. Etches et al. (1996). Science 76,1075-1083. Eyal-Giladi et Kovak (1976). Dev. Biol. 151, 575-585. Freidrich et Soriano (1991). Genes & Development 5, 1513-1523. Guatelli et al. (1990), Proc. Natl. Acad. Sci. USA 87 : Kemler et al. (1981). J. Embryol. Exp. Morph. 64, 45-60. Kievitis et al. (1991), J. Virol. Methods, 35, 273. Kôhler et Milstein. (1975) Nature 256, 495. Kwoh, et al. (1989), Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 86, 1173. Landegren et al. (1988) Science 241,1077. Luckow (1993), Curr. Op. Biotechnology 4,564. Matsui et al. (1992). Cell 70,841-847. Matthews et al. (1988), Anal. Biochem., 169, 1-25. Miele et al. (1983), J. Mol. Biol., 171, 281. Neddleman et Wunsch (1970) J. Mol. Biol. 48 : 443 Olins et Lee (1993), Curr. Op. Biotechnology 4 : 520. Pain et al. (1996). Development 122,2339-2348. Pain et al. (1999). Cells Tissues Organsl65, 212-219. Perricaudet et al. (1992). La Recherche 23 : 471. Pearson et Lipman (1988) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 85 : 2444 Prowse et Greider (1995). Proc Natl Acad Sci USA 92,4818-4822. Rohlmann et al. (1996) Nature Biotech. 14 : 1562. Rolfs, A. et al. (1991), Berlin : Springer-Verlag. Rosner et al. (1990). Nature 354, 686-692. Sambrook et al. (1989) Molecular cloning : a laboratory manual. 2nd Ed. Cold Spring Harbor Lab., Cold Spring Harbor, New York. Segev, (1992), Kessler C. Springer Verlag, Berlin, New-York, 197-205. Shamblott et al. (1998). Proc Natl Acad Sci USA 95, 13726-13731. Smith et Waterman (1981) Ad. App. Math. 2 : 482 Solter et Knowles (1978) Proc Natl Acad Sci USA. 75, 5565-5569. Stewart et Yound (1984), Solid phase peptides synthesis, Pierce Chem. Company, Rockford, 111, 2ème éd., (1984). Strickland et al. (1980). Cell 21, 347-355. Temin, (1986) Retrovirus vectors for gene transfer. In Kucherlapati R., ed. Gene Transfer, New York, Plenum Press, 149-187. Walker (1992), Nucleic Acids Res. 20 : 1691. Revendications 1. Acide nucléique purifié ou isolé, caractérisé en ce qu'il comprend une séquence nucléique choisie dans le groupe de séquences suivantes : a) SEQ ID N 1 ; b) la séquence d'un fragment d'au moins 15 nucléotides consécutifs d'une séquence choisie parmi SEQ ID N 1 ; c) une séquence nucléique présentant un pourcentage d'identité d'au moins 80 %, après alignement optimal avec une séquence définie en a) ou b) ; d) une séquence nucléique s'hybridant dans des conditions de forte stringence avec une séquence nucléique définie en a) ou b) ; e) la séquence complémentaire ou la séquence d'ARN correspondant à une séquence telle que définie en a), b), c) ou d). 2. Acide nucléique purifié ou isolé selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il comprend ou est constitué de SEQ ID N 1, la séquence complémentaire ou la séquence d'ARN correspondant à une de ces séquences. 3. Acide nucléique purifié ou isolé caractérisé en ce qu'il code pour un polypeptide possédant un fragment continu d'au moins 200 acides aminés de la protéine SEQ ID N 2. 4. Polypeptide isolé caractérisé en ce qu'il comprend un polypeptide choisi parmi : a) un polypeptide correspondant à SEQ ID N 2 ; b) un polypeptide variant d'un polypeptide de séquence définie en a) ; c) un polypeptide homologue à un polypeptide défini en a) ou b), comportant au moins 80 % d'homologie avec ledit polypeptide dea); d) un fragment d'au moins 15 acides aminés consécutifs d'un polypeptide défini en a), b) ou c) ; e) un fragment biologiquement actif d'un polypeptide défini en a), b) ou c). 5. Polypeptide selon la revendication 4, caractérisé en ce qu'il est constitué d'une séquence choisie parmi SEQ ID N 2, ou une séquence possédant au moins 80 % d'homologie avec cette séquence après alignement optimal. 6. Vecteur de clonage et/ou d'expression comprenant un acide nucléique selon l'une des revendications 1 à 3 ou codant pour un polypeptide selon l'une des revendications 4 et 5. 7. Cellule hôte caractérisée en ce qu'elle est transformée par un vecteur selon la revendication 6. 8. Cellule hôte contenant un acide nucléique selon l'une des revendications 1 à 3, caractérisée en ce qu'il s'agit d'une cellule ES d'oiseau modifiée en outre par introduction d'un gène exogène, ledit gène exogène étant uniquement et spécifiquement exprimé lorsque ladite cellule est maintenue à l'état pluripotent. 9. Cellule selon la revendication 8, caractérisée en ce que ledit gène exogène est un gène rapporteur. 10. Cellule selon la revendication 9, caractérisée en ce que ledit gène rapporteur est choisi parmi lacZ, GFP, luciférase, ROSA-p-geo, un gène de résistance à un antibiotique. 11. Cellule hôte contenant un acide nucléique selon l'une des revendications 1 à 3, caractérisée en ce qu'il s'agit d'une cellule d'oiseau modifiée en outre par introduction d'un acide nucléique exogène, ledit acide nucléique exogène étant intégré dans ledit acide nucléique selon l'une des revendications 1 à 3. 12. Cellule selon la revendication 11, caractérisée en ce que ledit acide nucléique exogène est un gène d'intérêt thérapeutique, éventuellement précédé d'un promoteur spatio-temporelle et/ou de séquences terminatrices. 13. Cellule selon la revendication 11, caractérisée en ce que ledit acide nucléique exogène est un marqueur génétique. 14. Cellule selon l'une des revendications 8 à 13, caractérisée en ce que ledit oiseau appartient à l'ordre des Galliformes. 15. Cellule selon la revendication 14, caractérisée en ce que ledit oiseau est un poulet ou une caille. 16. Cellule selon l'une des revendications 14 et 15, caractérisée en ce que ledit gène rapporteur est intégré sous le contrôle du promoteur du gène ens-I. 17. Cellule selon l'une des revendications 14 et 15, caractérisée en ce qu'il s'agit d'une cellule 9N2. 5, déposée à la Collection Nationale des Microorganismes le 11Mai 2000 sous le numéro d'ordre 1-2477. 18. Cellule d'oiseau différentiée, caractérisée en ce qu'elle dérive d'une cellule ES selon l'une des revendication 8 à 17. 19. Animal, excepté l'homme, caractérisé en ce qu'il comprend une cellule selon l'une des revendications 7 à 18. 20. Utilisation d'une séquence d'acide nucléique selon l'une des revendications 1 à 3 en tant que sonde ou amorce, pour la détection et/ou l'amplification de séquences d'acide nucléique. 21. Utilisation d'un acide nucléique selon l'une des revendications 1 à 3 comme oligonucléotide sens ou antisens. 22. Utilisation d'une séquence d'acide nucléique selon l'une des revendications 1 à 3 pour la production d'un polypeptide recombinant. 23. Procédé d'obtention d'un polypeptide recombinant caractérisé en ce que l'on cultive une cellule selon la revendication 7 dans des conditions permettant l'expression dudit polypeptide et que l'on récupère ledit polypeptide recombinant. 24. Polypeptide recombinant caractérisé en ce qu'il est obtenu par un procédé selon la revendication 23. 25. Anticorps monoclonal ou polyclonal caractérisé en ce qu'il lie sélectivement un polypeptide selon l'une des revendications 4, 5 ou 24. 26. Procédé de détection d'un polypeptide selon l'une des revendications 4, 5 ou 24, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes : a) mise en contact d'un échantillon biologique avec un anticorps selon la revendication 25 ; b) mise en évidence du complexe antigène-anticorps formé. 27. Trousse de réactifs pour la mise en oeuvre d'un procédé selon la revendication 26, caractérisée en ce qu'elle comprend : a) un anticorps monoclonal ou polyclonal selon la revendication 25 ; b) éventuellement des réactifs pour la constitution d'un milieu propice à la réaction immunologique ; c) les réactifs permettant la détection du complexe antigène- anticorps produit lors de la réaction immunologique. 28. Procédé de détermination du caractère pluripotent d'une cellule ES d'oiseau, caractérisé en ce qu'on détermine la présence d'un produit d'expression du gène correspondant à SEQ ID N 1 ou de l'ARNm de SEQ ID N 1. 29. Procédé selon la revendication 28, caractérisé en ce que la détection de l'ARNm de SEQ ID N 1 s'effectue par Northern Blot ou par RT-PCR en utilisant une sonde ou des amorces, par une utilisation selon la revendication 20. 30. Procédé selon la revendication 28, caractérisé en ce que l'on détecte la présence de la protéine SEQ ID N 2, par exemple en utilisant un anticorps selon la revendication 25. 31. Procédé de classification de l'appartenance d'un oiseau à l'ordre des Galliformes, caractérisé en ce que l'on détecte, dans le génome dudit oiseau, la présence d'un acide nucléique selon l'une des revendications 1 à 3. 32. Procédé de détermination de la présence d'un échantillon provenant d'un oiseau de l'ordre des Galliformes dans un échantillon alimentaire, caractérisé en ce que l'on détecte, dans ledit échantillon, la présence d'un acide nucléique selon l'une des revendications 1 à 3. 33. Puce à ADN caractérisée en ce qu'elle contient une séquence nucléique selon l'une des revendications 1 à 3. 34. Puce à protéines caractérisée en ce qu'elle contient un polypeptide selon l'une des revendications 4, 5 ou 24, ou un anticorps selon la revendication 25. 35. Procédé de détection et/ou de dosage d'un acide nucléique selon l'une des revendications 1 à 3 dans un échantillon biologique ou alimentaire, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes : a) mise en contact dudit échantillon avec un polynucléotide selon l'une des revendications 1 à 3, marqué ; b) détection et/ou dosage de l'hybride formé entre ledit polynucléotide et l'acide nucléique dudit échantillon. 36. Procédé de détection et/ou de dosage d'un acide nucléique selon l'une des revendications 1 à 3 dans un échantillon biologique ou alimentaire, caractérisé en ce qu'il comprend une étape d'amplification des acides nucléiques dudit échantillon à l'aide d'amorces choisies parmi les acides nucléiques selon l'une des revendications 1 à 2. 37. Procédé de criblage d'une substance ou d'un milieu capables d'induire une différentiation de cellules pluripotentes, caractérisé en ce que qu'il comprend les étapes suivantes : a) maintien de cellules ES selon l'une des revendications 7 à 17 dans un milieu de culture permettant le maintien du phénotype pluripotent ; b) ajout de ladite substance dans ledit milieu de culture ou remplacement dudit milieu de culture par le milieu à tester ; c) détermination de l'induction de la différentiation par l'absence d'expression de la protéine SEQ ID N 2 ou du gène exogène. 38. Procédé selon la revendication 37, caractérisé en ce qu'il est effectué avec des cellules selon l'une des revendications 8 à 17. 39. Procédé selon la revendication 37 ou 38, caractérisée en ce que l'on utilise des cellules 9N2. 5, et que l'on détecte l'absence d'expression de la p-galactosidase. 40. Procédé de criblage d'une substance capable de restaurer le caractère pluripotent de cellules différentiées, caractérisé en ce que qu'il comprend les étapes suivantes : a) maintien de cellules différentiées dans un milieu de culture adéquat ; b) remplacement dudit milieu de culture par un milieu permettant de maintenir un phénotype pluripotent, et contenant ladite substance à tester ; c) détermination de la restauration du caractère pluripotent desdites cellules par l'expression de la protéine SEQ ID N 2 ou du gène exogène, dans lesdites cellules. 41. Procédé selon la revendication 40, caractérisé en ce qu'il est effectué avec des cellules différentiées dérivant de cellules selon l'une des revendications 8 à 17. 42. Procédé selon la revendication 40 ou 41, caractérisée en ce que l'on utilise des cellules 9N2. 5 différentiées, et que l'on détecte l'expression de la p- galactosidase. 43. Milieu ou substance caractérisé en ce qu'il est directement obtenu par un procédé selon l'une des revendications 37 à 42. 44. Composé caractérisé en ce qu'il est choisi parmi a) un acide nucléique selon l'une des revendications 1 à 3 ; b) un polypeptide selon l'une des revendications 4, 5 ou 24 ; c) un vecteur selon la revendication 6 ; d) une cellule selon l'une des revendications 7 à 17 ; e) un anticorps selon la revendication 25 ; f) une substance selon la revendication 43, à titre de médicament.