Brevet FR2787783A1 — publié le 20000630

L'invention concerne un procédé de traitement bactérien par des micro-organismes capables de dégrader au moins un éther, notamment le méthyl-tertio-butyl éther et/ou le tertio-amyl méthyl éther et/ou l'éthyl tertio-butyl éther contenus dans des effluents aqueux. Elle s'applique particulièrement à l'industrie du traitement de l'eau. Il est connu que le méthyl-tertio-butyl éther-désigné ci-après sous le terme de MTBE- ainsi que le tertio-amyl méthyl éther, désigné ci-après sous le terme de TAME, sont des éthers qui peuvent être utilisés notamment comme additifs oxygénés dans les essences sans plomb dans le but d'augmenter leur indice d'octane. L'utilisation croissante d'additifs comme le MTBE, le TAME ou l'éthyl tertio-butyl éther, désigné ciaprès sous le terme d'ETBE, entraîne des volumes importants stockés et transportés, en mélange dans les essences notamment. Il est donc nécessaire de connaître le devenir de ces composés en cas de déversement accidentel conduisant à une pollution des sols et des eaux souterraines ou de surface. Le MTBE est un éther produit par condensation du méthanol sur l'isobutène, le TAME est un éther produit par condensation du méthanol sur l'isopentène et l'ETBE est un éther produit par condensation de l'éthanol sur l'isobutène. La structure de ces composés, qui comportent une liaison éther ainsi qu'un carbone tertiaire, est de nature à les rendre très résistants à la biodégradation par les micro-organismes présents dans l'environnement. La littérature récente relative à la biodégradation des éthers d'alkyle utilisés notamment dans les essences indique que le métabolisme de ces composés dans l'environnement n'est pas un phénomène commun et qu'il est relativement lent, tant en conditions aérobies qu'anaérobies (Salanitro J.P., 1995, "Understanding the limitations of microbial metabolism of ethers used as fuel octane enhancers". Curr.Op.Biotechnol., 6:337-340). La Demanderesse a isolé des bactéries aérobies, Gordona terrae CIP 1-1889 et Rhodococcus equi CIP 1-2053, possédant une capacité de dégradation de l'ETBE et leur mise en #uvre a fait l'objet d'une demande de brevet (FR97/09455). Chez les bactéries précédemment découvertes permettant de dégrader l'ETBE en solution dans l'eau, l'ETBE est utilisé pour partie au moins comme source de carbone par ces bactéries et sa dégradation aboutit à l'accumulation de tertio-butanol (TBA). Une autre nouvelle bactérie aérobie a été découverte par la Demanderesse (Pseudomonas cepacia CIP 1-2052) et cette bactérie est capable d'utiliser le TBA ainsi produit comme source de carbone en le dégradant jusqu'en dioxyde de carbone (minéralisation). La mise en #uvre de ces deux types de bactéries dégradant l'ETBE en TBA d'une part et minéralisant le TBA d'autre part, en culture mixte sur ETBE permet la dégradation sensiblement totale de l'ETBE contenu dans des effluents. Un des objets de l'invention est de décrire un procédé aérobie qui met en oeuvre ces nouvelles bactéries pour le traitement des eaux polluées dans le but de dégrader le MTBE, l'ETBE ou le TAME contenus en solution. On a remarqué que ces micro-organismes, capables de dégrader l'ETBE étaient capables de dégrader le MTBE et le TAME et que leur mise en #uvre dans des procédés de traitement de l'eau permettait d'abaisser significativement les concentrations résiduelles en MTBE et/ou en TAME et plus généralement en composés contenant au moins un groupement alcoxy et en particulier un groupement tertioalcoxy, dans des eaux résiduaires urbaines ou industrielles ou des nappes aquifères contaminées, désignées sous le nom général d'effluents, contaminées par ces produits ou par des carburants pouvant contenir ces produits oxygénés. De manière plus détaillée, l'invention concerne un procédé de traitement d'effluents aqueux contenant au moins un éther, avantageusement du méthyl tertiobutyléther (MTBE) et/ou du tertio-amylméthyléther (TAME) et/ou de l'éthyltertiobutyl-éther (ETBE) afin de réduire la concentration ledit éther, caractérisé en ce qu'on fait croître au moins une bactérie choisie dans le groupe formé par Gordona terrae CIP 1-1889 et Rhodococcus equi CIP 1-2053 en présence d'un substrat de croissance approprié et on fait dégrader l'éther contenu dans les effluents en présence dudit substrat par la biomasse desdites bactéries ainsi produites. Selon une caractéristique du procédé, lorsque les effluents aqueux contiennent essentiellement du MTBE, on peut faire dégrader avantageusement le MTBE contenu dans les effluents en y introduisant en outre, de façon conjointe ou dissociée au moins une bactérie choisie dans le groupe formé par Pseudomonas cepacia CIP 1-2052, Arthrobacter globiformis ATCC 53596, Bacillus coagulans ATCC 53595, Pseudomonas stutzeri ATCC 53602 et Mvcobacterium vaccae JOB5 ATCC 29678. Dans ce type de mise en #uvre, le groupement tertio-butyléther est dégradé en tertio-butylalcool (TBA) et la dégradation sensiblement totale du TBA en dioxyde de carbone et en eau est réalisée par l'adjonction des bactéries mentionnées qui ont la capacité de pousser sur le TBA ainsi produit. Ces souches, Gordona terrae CIP 1-1889, Rhodococcus equi CIP 1-2053 et Pseudomonas cepacia CIP 1-2052 ont été déposées par la Demanderesse à l'Institut Pasteur (CNCM, 25 rue du Docteur Roux, F-75724 PARIS CEDEX 15). Toute autre bactérie susceptible de croître sur le TBA peut entrer dans le cadre de la présente invention. Selon une autre caractéristique du procédé, lorsque les effluents contiennent essentiellement du TAME, on peut dégrader le TAME contenu dans les effluents en y introduisant en outre, de façon conjointe ou dissociée une bactérie Pseudomonas cepacia CIP 1-2052, qui a la capacité de pousser aussi sur l'alcool tertio-amylique (TAA) produit de dégradation du TAME et de le dégrader sensiblement totalement en dioxyde de carbone et en eau. Toute autre bactérie susceptible de croître sur le TAA peut entrer dans le cadre de la présente invention. Selon une caractéristique de l'invention, les bactéries Gordona terrae CIP 1-1889 et Rhodococcus equi CIP 1-2053 sont en général ensemencées sur un substrat de croissance, qui peut être, par exemple, au moins un composé choisi dans le groupe formé par l'éthanol, l'isopropanol, le n-butanol, le n-pentanol, un monosaccharide, un disaccharide, le dibutyléther, l'éthylbutyléther, l'éthyl tertio-butyléther, l'acétone, l'éthylène glycol, le diéthylène glycol, le glycérol et la tryptone. D'autres substrats de croissance à base de carbone et d'hydrogène peuvent être apportés. Chaque bactérie peut croître différemment en présence d'un type donné de substrat. On a obtenu d'excellents résultats en utilisant comme substrat de croissance de l'éthanol et/ou de l'acétone. Ce substrat de croissance particulier peut être introduit à une concentration qui n'excède pas le seuil de toxicité de ce substrat pour la bactérie considérée et comprise avantageusement entre 0,1mg/L et 5 500 mg/L d'effluents. Les bactéries peuvent tolérer une large gamme de concentrations en éther. De préférence, on peut dégrader des effluents aqueux contenant une concentration en éther et en particulier en MTBE ou en TAME ou en ETBE au plus égale à 5 000 mg/L et plus particulièrement comprise entre 0,01 mg/L et 400 mg/L. Il est néanmoins toujours possible de diluer l'effluent pour opérer dans des conditions optimales, compatibles avec les capacités de dégradation des souches bactériennes. Dans le cas où les effluents aqueux contiennent de l'éthyl tertio-butyléther (ETBE) comme contaminant, cet ETBE peut être utilisé au moins en partie comme substrat de croissance et donc comme source d'énergie. Le procédé découlant de la mise en oeuvre de ces bactéries est applicable pour traiter notamment des effluents pollués par du MTBE, du TAME et/ou de l'ETBE, de manière à ce que les concentrations en MTBE ou en TAME ou en ETBE dans les rejets soient compatibles avec les normes en vigueur. Ces bactéries ont été isolées de boues activées collectées à une station d'épuration d'eaux résiduaires urbaines, qui ont été traitées selon des techniques d'enrichissement en micro-organismes spécifiques. Les souches bactériennes résultantes Gordona terrae CIP 1-1889 et Rhodococcus equi CIP 1-2053 décrites pour dégrader l'ETBE dans la demande de brevet FR 97/09455, incorporée comme référence, ont été testées pour leur capacité à dégrader le MTBE et/ou le TAME quand ceux-ci étaient fournis comme seule source de carbone. Or, contrairement au cas décrit dans cette demande de brevet dans laquelle le contaminant (ETBE) est utilisé comme seule source de carbone et donc comme substrat de croissance, aucune dégradation du MTBE ou du TAME n'a été observée. En revanche, lors de la croissance sur un milieu contenant un substrat de croissance autre que MTBE et TAME, les souches G.terrae CIP 1-1889 et R.equi CIP I- 2053 s'avèrent alors capables de dégrader le MTBE ou le TAME contenu dans des effluents aqueux. Cela indique que le MTBE et le TAME qui ne sont pas substrats de croissance pour ces deux souches peuvent, en présence d'un substrat de croissance approprié, jouer le rôle d'inducteur du système enzymatique qui effectue leur dégradation. Ceci suggère que le procédé mettant en #uvre G.terrae CIP 1-1889 et R.equi CIP 1-2053, séparément ou conjointement, pour dépolluer des effluents contenant du MTBE ou du TAME comprendra en règle générale l'adjonction aux effluents, du substrat de croissance constituant la source de carbone nécessaire pour permettre simultanément la phase de croissance de ces bactéries et la dégradation du MTBE ou du TAME. Le substrat de croissance peut être apporté de manière continue ou discontinue à une concentration telle qu'elle puisse assurer la fourniture d'énergie nécessaire à la biodégradation, par exemple à une concentration au moins égale à celle de l'éther à dégrader. La mise en #uvre de ces bactéries pour le traitement d'effluents pollués par du MTBE, de l'ETBE ou du TAME peut être réalisée de la manière suivante : exemple dans un biofiltre où les bactéries sont fixées sur un support minéral ou organique ou bien elles peuvent être ajoutées comme inoculum à des boues de station d'épuration. Ces bactéries peuvent être également utilisées pour le traitement in situ d'aquifères pollués en les injectant comme inoculum avec un substrat de croissance approprié dans des puits forés dans l'aquifère. Quand on fait développer lesdites bactéries sur un système de biofiltre de volume adéquat, on peut introduire les effluents contenant l'éther, en particulier le MTBE, l'ETBE, et/ou le TAME en présence d'air ou d'oxygène dans le biofiltre à un débit d'alimentation adéquat de 0,05L/L à 5 L/L, par exemple de 0,1 à 2 L/L de biofiltre/heure selon la concentration en contaminant à traiter et on soutire l'effluent débarrassé au moins en partie de l'éther contaminant. L'invention sera mieux comprise au vu des exemples suivants et des figures, parmi lesquelles : - la figure 1 montre la capacité de dégradation du MTBE d'une culture mixte de Gordona terrae CIP I-1889 et de Pseudomonas cepacia CIP 1-2052 en présence d'éthanol, et - la figure 2 illustre la capacité de dégradation du TAME d'une culture mixte de Gordona terrae CIP 1-1889 et de Pseudomonas cepacia CIP 1-2052 en présence d'éthanol. EXEMPLE On a étudié la capacité à dégrader le MTBE ou le TAME de la bactérie Gordona terrae CIP 1-1889 en présence d'un substrat de croissance. Une préculture de Gordona terrae CIP I-1889 est effectuée sur 200 mL de milieu complet Luria dont la composition est la suivante: -Biotrypcase.............................. 10g -Extrait de levure..........................5g -NaCI.......................................5g -Glucose...................................1g -H20............................q.s.p.llitre. La biomasse obtenue est collectée par centrifugation puis ensemencée sur milieu minimum MM1 dont la composition est la suivante : -KH2P04..............................6,8g -K2HP04..............................8,7g -Na2HP04,2H20....................0,334g -NH4C!................................!,5g -CaC12,2H20.........................0,0364g -FeC13,6H20,........................0,0012g -Solution de vitamines...............1mL -HZO............................q.s.p.1 litre pH=6,95 La solution de vitamines a la composition suivante pour 1 litre d'eau distillée : -Biotine..............................200 mg -Riboflavine..........................50 mg -Acide nicotinamique................50 mg -Panthoténate.........................50 mg -Acide p-aminobenzoïque...........50 mg -Acide folique.........................20 mg -Thiamine..............................15 mg -Cyanocobalamine...................1,5 mg À ce milieu, on ajoute différentes sources de carbone à une concentration d'environ 100 mg/L en présence de MTBE ou de TAME ajoutés à une concentration d'environ 100 mg/L. Les sources de carbone qui ont été testées sont indiquées dans le tableau 1. Les cultures sont incubées à 30 C. Les concentrations résiduelles en MTBE et TAME ainsi que les concentrations en alcools qui en sont issus, c'est-à-dire le TBA et le TAA respectivement, sont déterminées de la façon suivante : un échantillon de culture est prélevé, filtré et injecté sur un appareil de chromatographie à phase gazeuse (CPG) équipé d'un intégrateur calculant les concentrations résiduelles par intégration de la surface des différents pics obtenus sur les chromatogrammes. Les résultats sont présentés dans le tableau 1. On constate que les cellules en croissance sur différentes sources de carbone sont capables de dégrader le MTBE ou le TAME ajoutés au milieu de culture. Ces composés sont donc capables d'induire chez la souche l'activité enzymatique de dégradation des éthers. La dégradation des éthers s'effectue par ce qu'il est convenu d'appeler co-métabolisme puisque le composé dégradé n'est pas substrat de croissance. TABLEAU I Capacité de dégradation du MTBE ou du TAME par co-métabolisme de Gordona terrae CIP 1-1889 en présence de différents substrats carbonés % de transformation du % de transformation du Source de carbone testée en MTBE en TBA TAME en TAA présence d'éther Lactose 30,5 74,5 Diéthylène glycol 45 79 Butanol 50 75 Pentanol 50 80 Glucose 54 100 Saccharose 65 100 Éthylène glycol 100 100 Acétone 100 100 Isopropanol 100 100 Éthanol 100 100 ETBE 100 100 La biomasse mise en #uvre était de 315 mg/L (poids sec) et les dosages ont été effectués après 7,5 heures d'incubation. EXEMPLE 2 (COMPARATIF) On a étudié la capacité de la bactérie Gordona terrae CIP 1-1889 à dégrader l'ETBE, le MTBE ou le TAME, fournis comme substrat de croissance. La bactérie Gordona terrae CIP 1-1889 est ensemencée dans une fiole du milieu Luria décrit dans l'exemple 1. Les cultures sont incubées à 30 C. Les cellules bactériennes sont récoltées par centrifugation et utilisées pour ensemencer des fioles du milieu MM1 décrit dans l'exemple 1 contenant comme seule source de carbone et d'énergie de l'ETBE ou du MTBE ou du TAME à concentration d'environ 100 mg/L. La concentration cellulaire est évaluée à l'ensemencement par mesure du poids sec qui est de 87,5 mg/L. Les cultures sont ensuite incubées à 30 C. Après 1 semaine d'incubation les concentrations résiduelles en ETBE, MTBE ou TAME ainsi que celles des alcools éventuellement formés sont déterminées par CPG comme décrit dans l'exemple 1. Dans le cas de l'incubation en présence d'ETBE on constate que tout l'ETBE fourni a été dégradé en TBA alors que le MTBE et le TAME n'ont pas été dégradés. Dans des conditions où le MTBE ou le TAME sont fournis comme substrats de croissance, la bactérie Gordona terrae CIP 1-1889 n'est donc pas capable de dégrader le MTBE et le TAME. Ceci est dû au fait que le MTBE et le TAME, contrairement à l'ETBE, ne peuvent pas être sources de carbone et d'énergie pour la bactérie. EXEMPLE 3 On a étudié la capacité à dégrader le MTBE ou le TAME en présence d'ETBE avec des cellules non-proliférantes de la bactérie Gordona terrae CIP 1-1889. Une culture de Gordona terrae CIP 1-1889 est effectuée sur le milieu MM1 décrit dans l'exemple 1, additionné d'ETBE à 400 mg/L décrit dans l'exemple 1. La culture est incubée à 30 C. Lorsque l'ETBE a été dégradé en TBA, ce qui est mesuré en CPG comme décrit dans l'exemple 1, les cellules bactériennes sont récoltées par centrifugation puis incubées à une concentration cellulaire de 0,5 g/L de poids sec dans du tampon Tris HCI 0,1M, pH 7,0 en présence d'ETBE, ou en présence de MTBE et d'ETBE ou en présence de TAME et d'ETBE, chaque éther étant à une concentration d'environ 100 mg/L. Les concentrations résiduelles en ETBE, MTBE et TAME sont déterminées par CPG. La dégradation de l'ETBE et du MTBE par Gordona terrae CIP 1-1889 aboutit à l'apparition d'un pic de TBA et celle du TAME aboutit à l'apparition d'un pic de TAA. Les activités spécifiques de dégradation de l'ETBE, du MTBE et du TAME ont été mesurées dans les différentes conditions d'incubation et les valeurs obtenues sont présentées dans le tableau 2. On constate que la bactérie Gordona terrae CIP 1-1889 cultivée sur ETBE est capable de dégrader tous les éthers testés mais à des vitesses différentes, y compris en mélange. TABLEA U 2 Capacité de dégradation de l'ETBE, du MTBE ou du TAME de la bactérie Gordona terrae CIP 1-1889 après croissance de la bactérie en présence d'ETBE Activité Activité Activité spécifique de spécifique de spécifique de N Éther dégradation dégradation dégradation d'expérience testé de l'ETBE du MTBE du TAME (en mg d' ETBE (en mg de MTBE (en mg de dégradé.h-1. dégradé.h-1. TAME g-1 poids sec) g-1 poids sec) dégradé.h-1. ~~~~~~~ ~~~~~~~~~~~ g-1 poids sec) 1 ETBE 160 ETBE 2 + 158 19 MTBE ETBE 3 + 159,6 72,5 TAME EXEMPLE 4 On a évalué les activités spécifiques de dégradation du MTBE ou du TAME par la bactérie Gordona terrae CIP 1-1889 en présence de différents substrats. La bactérie Gordona terrae CIP 1-1889 est cultivée sur 200 mL du milieu complet Luria décrit dans l'exemple 1, sous agitation à 30 C pendant 24 heures. Les cellules sont collectées par centrifugation et reprises dans 100 mL du milieu minimum MM1décrit dans l'exemple 1. Des fioles de 50 mL du milieu MM1sont ensemencées avec cette suspension cellulaire à raison de 10%. La teneur en biomasse de la suspension cellulaire est évaluée par mesure du poids sec. On ajoute à ces milieux un substrat de croissance carboné à une concentration de l'ordre de 100 mg/L. Les substrats qui ont été utilisés sont : l'éthanol ou l'isopropanol ou le pentanol ou l'acétone ou le butanol. Le MTBE ou le TAME est alors ajouté dans les fioles à une concentration de l'ordre de 100 mg/L afin d'évaluer leur dégradation en présence de chacun des substrats de croissance énumérés ci-dessus. Les différentes cultures sont incubées à 30 C. Des prélèvements sont effectués au début de l'expérimentation puis toutes les heures. Les concentrations résiduelles en MTBE et TAME ainsi que les concentrations en alcools dérivés (TBA ou TAA) sont déterminées par CPG comme décrit dans l'exemple 1. On peut ainsi calculer des vitesses de dégradation du MTBE ou du TAME dans les différentes conditions et les activités spécifiques par rapport au poids sec final dans les différentes conditions. Les résultats de ces essais sont présentés dans le tableau 3. La mesure des vitesses de dégradation fait apparaître que l'éthanol et l'acétone sont des substrats particulièrement favorables. On a par ailleurs remarqué qu'en présence de ces différents substrats de croissance, la bactérie dégrade l'ETBE au moins autant que le TAME. TABLEAU 3 Activités spécifiques de dégradation du MTBE ou du TAME par co-métabolisme en présence de différents substrats carbonés par la bactérie Gordona terrae CIP 1-1889 Activité spécifique de Activité spécifique de Substrat carboné testé en dégradation du MTBE dégradation du TANIE présence d'éther (en mg de MTBE (en mg de TAME dégradé.h-1. dégradé.h-1. g-1 poids sec) g-1 poids sec) Éthanol 34,7 107,2 Isopropanol 24,8 42,3 Butanol 24,4 73,5 Pentanol 22,7 27,5 Acétone 36,4 65,8 EXEMPLE 5 On a étudié la dégradation du MTBE ou du TAME par une culture mixte contenant Gordona terrae CIP 1-1889 et Pseudomonas cepacia CIP 1-2052 en culture liquide. La souche Pseudomonas cepacia CIP 1-2052 est cultivée sur 700 mL de milieu minimum, appelé milieu MM2, dont la composition est la suivante : -KH2P0........................... I ,4 g -K2HP0...........................1,7 g -NaN03 ............................. 1,5 g -VigS04, 7H20.....................O,Sg -CaCl2, 2H20....................0,04 g -FeCl3, 6H20...................0,012 g -Solution de vitamines ............... 1 mL -H?0...........................q.s.p.l litre La composition de la solution de vitamines est décrite dans l'exemple 1. On ajoute à ce milieu du TBA à une concentration finale de l'ordre de 200 mg/L. L'incubation est effectuée sous agitation à 30 C pendant 72 heures. Les cellules sont collectées par centrifugation. Le culot est repris dans 5 mL du même milieu minimum, MM2. La souche Gordona terrae CIP 1-1889 est cultivée sur 100 mL du milieu complet Luria décrit dans l'exemple 1, sous agitation à 30 C pendant 12 heures. Les cellules sont collectées par centrifugation et reprises dans 50 mL du milieu minimum MM2 décrit plus haut dans cet exemple. On réalise deux cultures mixtes, c'est-à-dire contenant à la fois la bactérie Gordona terrae CIP 1-1889 et la bactérie Pseudomonas cepacia CIP 1-2052, dans deux fioles contenant 250 mL du milieu minimum MM2. Chacune de ces fioles est ensemencée avec 2,5 mL de chacune des suspensions cellulaires ainsi obtenues. On ajoute dans une des fioles un mélange d'éthanol et de MTBE et dans l'autre fiole un mélange d'éthanol et de TAME. Les mesures des concentrations résiduelles CR en éthanol, en MTBE ou en TAME ainsi que les mesures des concentrations en alcools formés (TBA ou TAA) sont effectuées par CPG comme décrit dans l'exemple 1. Après consommation de la première addition d'éthanol la biodégradation du MTBE ou du TAME s'arrête. Nous avons alors effectué des additions successives d'éthanol jusqu'à consommation du MTBE ou du TAME supérieure à 90%. Les résultats de ces expérimentations sont présentés dans les figures 1 et 2 qui montrent les concentrations résiduelles en substrat ou en contaminant à dégrader (exprimé en mg/L) en fonction du temps "t" (exprimé en heures). La biodégradation du MTBE ou du TAME est concomitante à la dégradation de l'éthanol et s'arrête après la fin de la consommation de ce substrat. Les additions subséquentes d'éthanol (une à 80 heures dans le cas du MTBE; deux respectivement à 21heures et à 126 heures dans le cas du TAME) se traduisent, aussi bien dans le cas du MTBE que du TAME, par une reprise de l'activité de dégradation de l'un ou l'autre de ces composés. Au cours de ces expériences , le MTBE fourni a été dégradé à 94,2% et le TAME à 91,4%. En ce qui concerne les alcools produits, le TBA ou le TAA, les figures 1 et 2 montrent que leur présence peut être mise en évidence lorsque la dégradation de l'éther correspondant par G. terrae CIP 1-1889 est plus rapide que la dégradation de l'alcool par P. cepacia CIP 1-2052. Cependant, cette présence n'est que transitoire. Chacun des deux alcools, TBA et TAA, est complètement dégradé par P. cepacia CIP 1-2052 pendant la durée de l'expérience. EXEMPLE 6 On a étudié la capacité à dégrader le MTBE ou le TAME en présence d'ETBE avec des cellules non-proliférantes de la bactérie Rhodococcus equi CIP 1-2053. Une culture de Rhodococcus equi CIP 1-2053 est effectuée sur le milieu MM1 décrit dans l'exemple 1, additionné d'ETBE à 400 mg/L décrit dans l'exemple 1. La culture est incubée à 30 C. Lorsque l'ETBE a été dégradé en TBA, ce qui est mesuré en CPG comme décrit dans l'exemple 1, les cellules bactériennes sont récoltées par centrifugation puis incubées à une concentration cellulaire de 0,5 g/L de poids sec dans du tampon Tris HCI 0,1M, pH 7,0 en présence de MTBE et d'ETBE ou en présence de TAME et d'ETBE à une concentration en chacun des éthers de 50 mg/L. Les concentrations résiduelles en ETBE, MTBE et TAME sont déterminées par CPG. La dégradation de l'ETBE et du MTBE par Rhodococcus equi CIP 1-2053 aboutit à l'apparition d'un pic de TBA et celle du TAME aboutit à l'apparition d'un pic de TAA. Les activités spécifiques de dégradation de l'ETBE, du MTBE et du TAME ont été mesurées dans les différentes conditions d'incubation et les valeurs obtenues sont présentées dans le tableau 4. On constate que la bactérie Rhodococcus equi CIP 1-2053 cultivée sur ETBE est capable de dégrader tous les éthers testés mais à des vitesses différentes, y compris en mélange. TABLEAU 4 Capacité de dégradation de l'ETBE, du MTBE ou du TAME de la bactérie Rhodococcus equi CIP 1-2053 après croissance de la bactérie en présence d'ETBE Activité Activité Activité spécifique de spécifique de spécifique de N Éther dégradation dégradation dégradation d'expérience testé de l'ETBE du MTBE du TAME (en mg d' ETBE (en mg de MTBE (en mg de dégradé.h-1. dégradé.h-1. TANIE g-1 poids sec) g-1 poids sec) dégradé.h-1. g-1 poids sec) ETBE 1 + 40,6 3,9 MTBE ETBE 2 + 51 Il,8 TAME EXEMPLE 7 On a étudié la capacité à dégrader différents éthers avec des cellules nonproliférantes de la bactérie Gordonaterrae CIP 1-1889 après croissance sur milieu minimum contenant un substrat de l'exemple 1, en particulier l'ETBE. Une culture de Gordona terrae CIP 1-1889 est effectuée selon l'exemple 1. Après croissance, les cellules bactériennes sont récoltées par centrifugation puis incubées à une concentration cellulaire de 0,7 g/L de poids sec dans du tampon Tris HCl 0,1 M, pH 7,0 en présence de différents éthers dont la structure est fournie dans le tableau 5 et du substrat de croissance de l'exemple 1. Les concentrations en éthers sont déterminées par CPG au début de l'expérimentation. Les suspensions cellulaires sont incubées à 30 C et les concentrations résiduelles en éthers sont alors déterminées après 24 heures d'incubation. Les pourcentages de dégradation des différents éthers sont présentées dans le tableau 6. On constate que la bactérie Gordona terrae CIP 1-1889 cultivée sur ETBE est capable de dégrader tous les éthers testés mais avec des taux de dégradation différents. TABLEAU 5 Liste et structure des différents éthers testés Dénomination de l'éther Abréviation Structure Butyl éthyl éther BEE CH3-(CH2)3-0-CH2-CH3 Dibutyl éther DBE CH3-(CH2)3-0-(CH2)3-CH3 Isopropyl éther IPE (CH 3)2-CH-0-CH-(CH3)2 tertio-butoxy 2-éthoxy éthane TBEE (CH3)3-C-O-(CH2)2-O-CH2-CH3 tertio-butoxy 2-Méthoxy éthane TBME (CH3)3-C-O-(CH2)2-O-CH3 TABLEAU 6 Capacité de dégradation de différents éthers de la bactérie Gordona terrae CIP 1-1889 Ether testé Pourcentage de dégradation BEE 100% DBE 100% IPE 78% TBEE 72% TB ME 63% REVENDICATIONS # ) Procédé de traitement d'effluents aqueux contenant au moins un éther, de préférence de l'éthyl tertio-butyl éther (ETBE) et/ou du méthyl tertio-butyléther (MTBE) et/ou du tertio-amylméthyléther (TAME) afin de réduire la concentration dudit éther, caractérisé en ce qu'on fait croître en conditions aérobies au moins une bactérie choisie dans le groupe formé par Gordona terrae CIP 1-1889 et Rhodococcus equi CIP 1-2053 en présence d'un substrat de croissance et on fait dégrader l'éther contenu dans les effluents en présence dudit substrat par la biomasse desdites bactéries ainsi produites. 2) Procédé selon la revendication 1, dans lequel les effluents aqueux contiennent essentiellement du MTBE et dans lequel on fait dégrader le MTBE contenu dans les effluents en y introduisant de façon conjointe ou dissociée au moins une bactérie choisie dans le groupe formé par Pseudomonas cepacia CIP 1-2052, Arthrobacter globiformis ATCC 53596, Bacillus coagulans ATCC 53595, Pseudomonas stutzeri ATCC 53602 et Mvcobacterium vaccae JOB5 ATCC 29678. 3) Procédé selon la revendication 1, dans lequel les effluents aqueux contiennent essentiellement du TAME et dans lequel on fait dégrader le TAME contenu dans les effluents en y introduisant de façon conjointe ou dissociée une bactérie Pseudomonas cepacia CIP 1-2052. 4) Procédé selon l'une des revendications 1 à 3, dans lequel les bactéries Gordona terrae CIP I-1889 ou Rhodococcus equi CIP 1-2053 et Pseudomonas cepacia CIP 1-2052 sont préalablement sélectionnées dans une boue activée. 5) Procédé selon l'une des revendications 1 à 4 dans lequel le substrat de croissance est au moins un composé choisi dans le groupe formé par l'éthanol, l'isopropanol, le nbutanol, le n-pentanol, un monosaccharide, un disaccharide, le dibutyléther, l'éthylbutyléther, l'éthyl tertio-butyléther, l'acétone, l'éthylène glycol, le diéthylène glycol, le glycérol et la tryptone. 6) Procédé selon l'une des revendications 1 à 5, dans lequel le substrat de croissance est de l'éthanol et/ou de l'acétone. 7) Procédé selon l'une des revendications 1 à 6, dans lequel le substrat de croissance est à une concentration au moins égale à celle de l'éther à dégrader. 8) Procédé selon l'une des revendications 1 à 7, dans lequel la concentration en MTBE de l'effluent est au plus égale à 5 g/L, et de préférence comprise entre 0,01 mg/L et 400 mg/L. 9) Procédé selon l'une des revendications 1 à 8, dans lequel la concentration en TAME de l'effluent est au plus égale à 5 g/L et de préférence comprise entre 0,01 mg/L et 400 mg/L. 10) Procédé selon l'une des revendications 1 à 9, dans lequel la concentration en ETBE est a plus égale à 5g/l et de préférence comprise entre 0,01mg/l et 400 mg/1. 11) Procédé selon l'une des revendications 1 à 10, dans lequel on fait développer lesdites bactéries sur un système de biofiltre de volume adéquat, on introduit les effluents contenant ledit éther en présence d'air ou d'oxygène dans le biofiltre à un débit d'alimentation de 0,05 à 5 L/L de biofiltre/heure et on soutire les effluents débarrassés au moins en partie de l'éther. 12) Procédé selon l'une des revendications 1 à 10, dans lequel les effluents aqueux sont un aquifère et dans lequel on injecte comme inoculum lesdites bactéries avec le substrat de croissance en présence d'air ou d'oxygène par l'intermédiaire de puits forés dans ledit aquifère.