Brevet FR2796081A1 — publié le 20010112

La présente invention concerne un procédé de préparation du 1,3propanediol à partir d'une substance carbonée, ledit procédé comportant une étape de culture d'un micro-organisme recombinant non producteur de coenzyme B12 en l'absence d'ajout de coenzyme B12 ou de l'un de ses précurseurs. L'invention concerne aussi un acide nucléique codant pour une glycérol deshydratase dont l'activité catalytique est indépendante de la présence de coenzyme B12 ou de l'un de ses précurseurs ainsi qu'un acide nucléique codant une 1,3-propanol déshydrogénase intervenant dans la synthèse du 1,3propanediol. L'invention est également relative à des vecteurs et cellules hôtes recombinants comprenant de tels acides nucléiques ainsi qu'aux polypeptides codés par ces derniers. Le 1,3-propanediol est un composé d'un grand intérêt industriel, principalement mis en oeuvre dans l'industrie des détergents et dans celle des polymères. Ainsi, le 1,3-propanediol est utilisé dans les lessives liquides en tant qu'agent stabilisant des lipases, amylases et protéases ainsi que comme adoucissant protecteur dans les détergents liquides pour lavage à la main de la vaisselle. Par ailleurs, le 1,3-propanediol est utilisé de manière croissante dans l'industrie des polymères, plus particulièrement en tant que monomère de synthèse de polyesters, polyéthers, ou polyuréthanes. Actuellement, la production de 1,3-propanediol est réalisée principalement par synthèse chimique par hydratation (en milieu acide) d'acroléine en 3-hydroxypropionaldéhyde, lequel est ensuite réduit par hydrogénation catalytique en 1,3-propanediol. Un tel procédé est coûteux et met en oeuvre un produit toxique, l'acroléine. De plus, cette synthèse est peu sélective et génère un grand nombre de composés secondaires non utilisables. Une autre voie de synthèse consiste en l'hydrocarbonylation d'oxyde d'éthylène par le monoxyde de carbone et l'hydrogène sous haute pression en présence de catalyseurs et solvants. Une telle réaction produit un dioxane qui est ensuite hydrogéné en 1,3propanediol. Ce second procédé de synthèse chimique est également très coûteux. Depuis quelques années, une alternative à la production de 1,3propanediol par synthèse- chimique a fait l'objet de différents travaux: il s'agit de la bioconversion du glycérol en 1,3-propanediol par certaines souches bactériennes telles que Citrobacter, Clostridium, Enterobacter, Klebsiella, Lactobacillus et Pelobacter. En particulier, la conversion du glycérol en 1,3-propanediol chez les bactéries anaérobies facultatives telles que les bactéries du genre Klebsiella, du genre Citrobacter ou encore Enterobacter agglomerans a été étudiée. Ainsi, des essais de clonage des gènes codant pour des enzymes responsables de la conversion du glycérol en 1,3-propanediol ont-ils été tentés à partir de la bactérie Klebsiella pneumoniae. Plus particulièrement, le clonage des gènes codant pour deux enzymes a été recherché, respectivement une glycérol déshydratase qui catalyse la conversion du glycérol en 3-hydroxypropionaldéhyde, et une 1,3-propanediol déshydrogénase qui catalyse la conversion du glycérol en 3hydroxypropionaldéhyde en 1,3-propanediol. Les brevets US 5,633,362 et 5,821,092 décrivent le clonage d'un fragment génomique d'environ 35 kb de la bactérie Klebsiella pneumoniae, ledit fragment d'ADN contenant une séquence codant pour une diol déshydratase active. Un tel fragment génomique a été obtenu par criblage de plusieurs banques de cosmides des espèces bactériennes Klebsiella pneumoniae et Klebsiella aerogenes. Il est décrit dans ces brevets que des souches de E. Coli DH5a ont été transformées avec ces cosmides et les bactéries transformantes criblées pour leur capacité à convertir le glycérol en 1,3-propanediol. Une faible production de 1,3propanediol a été observée chez certains clones de bactéries transformantes. Il en a été déduit que la diol déshydratase codée par les cosmides sélectionnés pourrait être responsable de la conversion du glycérol en 1,3-propanediol observée. Néanmoins, la production de 1,3-propanediol par les souches de E. coli DH5a transformées par les cosmides sélectionnés nécessitait obligatoirement la présence de vitamine B12 ou de l'un de ses précurseurs dans le milieu de culture bactérien. De plus, la durée de fermentation nécessaire à la détection d'une production de 1,3-propanediol était très longue (de 78 à 132 heures) et le niveau de production du 1,3-propanediol très faible. Le brevet US N 5,686,276 au nom de DU PONT DE NEMOURS & COMPANY décrit un procédé permettant la bioconversion du D-glucose en 1,3propanediol par une souche de E.coli transformée par de l'ADN de cosmide originaire de Klebsiella pneumoniae. A nouveau, la production de 1,3-propanediol nécessite l'utilisation de milieux de culture adaptés aux cellules de E. coli transformée par un cosmide de Klebsiella pneumoniae contenant de la vitamine B12, par exemple à la concentration de 800 g/ml. Les niveaux de production de 1,3-propanediol observés étaient très faibles, de l'ordre de 0,5 g/l à 10 g/l. La présence de vitamine B12 dans le milieu de culture des cellules transformées avec l'ADN de Klebsiella pneumoniae des brevets US cités cidessus est obligatoire du fait que le coenzyme B12 est un cofacteur nécessaire à l'activité catalytique de la glycérol déshydratase de Klebsiella pneumoniae . Le coenzyme B12, ou l'un quelconque de ces précurseurs, tel que la vitamine B12, est un composé excessivement.coûteux et peu stable, ce qui rend difficile, voire impossible, la transposition à l'échelle industrielle des procédés de conversion du glucose ou du glycérol en 1,3-propanediol par fermentation bactérienne à l'aide de telles souches. En outre, le coenzyme B12 et ses précurseurs traversent difficilement les parois membranaires de certains micro-organismes, telles que les levures, ce qui nécessite la présence de très hautes concentrations de ces composés dans le milieu de culture afin qu'ils soient accessibles aux enzymes intracellulaires dont le coenzyme B12 est le cofacteur. Par ailleurs, une alternative qui consisterait à introduire l'ADN codant pour les glycérol déshydratases connues, intervenant dans la conversion du glycérol en 1,3-propanediol, dans des bactéries synthétisant la vitamine B12 se heurterait à des obstacles techniques considérables. En effet, seules certaines espèces bactériennes synthétisent naturellement la vitamine B12, telles que les bactéries Pseudomonas ou encore les propionibactéries, dont la génétique est très peu connue et qui sont donc peu aptes à subir des modifications génétiques. D'autres bactéries synthétisant naturellement la vitamine B12, dont la génétique est mieux connue, telle que Klebsiella pneumoniae, présentent d'importants problèmes de toxicité, ce qui les rend peu aptes à une utilisation dans l'industrie. Outre ce premier désavantage, seule une faible production de 1,3propanediol a pu être obtenue après transformation de Klebsiella pneumoniae. Ainsi, la demande PCT N WO 98/21 339 décrit des Klebsiella pneumoniae recombinantes exprimant à la fois les gènes de métabolisation du glucose en glycérol et les gènes de métabolisation du glycérol en 1,3-propanediol. La production de 1,3-propanediol observée à partir de glucose était faible, de l'ordre de 10g par litre. Les obstacles techniques à la mise au point d'un procédé de bioconversion d'une substance carbonée en 1,3-propanediol mentionnés cidessus, ont été surmontés par l'invention. Le demandeur a en effet isolé et caractérisé un acide nucléique qui code pour une glycérol déshydratase dont l'activité catalytique est indépendante de la présence de coenzyme B12 ou de l'un quelconque de ces précurseurs. Les gènes codant pour la glycérol déshydratase indépendante du coenzyme B12 ont été isolés par le demandeur à partir du génome de la bactérie Clostridium butyricum VPI 1718. Ils codent pour une protéine dimérique constituée de deux sous-unités protéiques, respectivement les polypeptides ORF11 et ORF12. Il a été montré selon l'invention que les séquences codant pour les polypeptides ORF11 et ORF12 sont localisées sur un opéron unique dans le génome de Clostridium butyricum, ledit opéron comprenant également, en aval de la séquence nucléique codant pour la sous-unité ORF12, une région codant pour une 1,3-propanediol déshydrogénase. L'opéron selon l'invention comprend, de l'extrémité 5' vers l'extrémité 3, un promoteur de la transcription , la séquence orf11codant pour ORF11, la première sous-unité de la glycérol déshydratase indépendante du coenzyme B12, la séquence orf12, codant pour ORF12, la seconde sous-unité de la glycérol déshydratase et une séquence dhaT, codant pour une nouvelle 1,3-propanediol déshydrogénase (DHAT). Ainsi, les séquences nucléiques codant pour les deux sous-unités protéiques de la glycérol déshydratase et pour la 1,3-propanediol déshydrogénase font partie d'un opéron unique, les trois séquences codantes étant co-régulées par une séquence promotrice unique située du côté 5' de la séquence codant pour la sous-unité ORF11. Il a en outre été montré selon l'invention que la transformation d'un hôte cellulaire bactérien avec une séquence comprenant les régions codant respectivement pour ORF11, ORF12 et DHAT était de nature à conférer à l'hôte cellulaire transformé la capacité de produire le 1,3-propanediol à partir du glucose ou du glycérol en l'absence du coenzyme B12 ou de l'un quelconque de ses précurseurs, lorsque ces séquences sont placées sous le contrôle d'un promoteur approprié, fonctionnel dans l'hôte cellulaire dans lequel l'expression de ces séquences est recherchée. Le demandeur a également montré que la transformation d'un hôte cellulaire bactérien produisant naturellement le 1,3-propanediol par les séquences codant pour les deux sous-unités de la glycérol déshydratase selon l'invention était de nature à induire une augmentation significative de la production de propanediol chez les hôtes bactériens recombinants obtenus . L'invention a donc pour objet un procédé de préparation du 1,3propanediol à partir d'une substance carbonée, ledit procédé comportant au moins une étape de culture d'un micro-organisme recombinant dans lequel a été intégré au moins un acide nucléique codant pour les deux sous-unités d'une glycérol déshydratase dont l'activité catalytique est indépendante de la présence de coenzyme B12 ou l'un de ses précurseurs. Avantageusement, la glycérol déshydratase dont l'activité catalytique est indépendante de la présence du coenzyme B12 provient de la bactérie Clostridium butyricum. De manière préférentielle, la glycérol déshydratase indépendante du coenzyme B12 est une protéine dimérique composée d'un premier polypeptide ayant au moins 50% d'identité en aminoacides avec le polypeptide de séquence SEQ ID N 6 et d'un second polypeptide ayant au moins 50% d'identité en aminoacides avec le polypeptide de séquence SEQ ID N 7. De manière tout à fait avantageuse, la glycérol déshydratase indépendante du coenzyme B12 est composée d'un premier et d'un second polypeptide ayant au moins 60%, 65%, 70%, 80%, 85%, 90%, 95% ou encore 99% d'identité en aminoacides avec respectivement le polypeptide de séquence SEQ ID N 6 et le polypeptide de séquence SEQ ID N 7. Le pourcentage d'identité de nucléotides ou d'acides aminés entre deux séquences, au sens de la présente invention, peut être déterminé en comparant deux séquences alignées de manière optimale, à travers une fenêtre de comparaison. La partie de la séquence nucléotidique ou peptidique dans la fenêtre de comparaison peut ainsi comprendre des additions ou des délétions (par exemple des gaps ) par rapport à la séquence de référence (qui ne comprend pas ces additions ou ces délétions) de manière à obtenir un alignement optimal des deux séquences. Le pourcentage d'identité est calculé en déterminant le nombre de positions auxquelles une base nucléique ou un acide aminé identique est observé pour les deux séquences comparées, puis en divisant le nombre de positions auxquelles il y a identité entre les deux bases ou les deux acides aminés, par le nombre total de positions dans la fenêtre de comparaison, puis en multipliant le résultat par cent afin d'obtenir le pourcentage d'identité de séquences. L'alignement optimal des séquences pour la comparaison peut être réalisé de manière informatique à l'aide d'algorithmes connus (par exemple le logiciel FASTA de la Société WISCONSIN GENETICS SOFTWARE PACKAGE, GENETICS COMPUTER GROUP (GCG), 575 Science Doctor, Madison, WISCONSIN). A titre d'illustration, le pourcentage d'identité de séquence pourra être calculé à l'aide du logiciel précité FASTA, en utilisant exclusivement les paramètres par défaut. Les différences en acides aminés que peut comprendre un polypeptide selon l'invention par rapport à la séquence en acides aminés de référence, telle que définie dans le listage de séquences présenté à la fin de la présente description, peut résulter en des substitutions, délétions ou additions d'un ou plusieurs acides aminés consécutifs ou non. Selon un autre aspect du procédé selon l'invention, le micro-organisme recombinant comprend en outre un acide nucléique codant une 1,3-propanediol déshydrogénase, de préférence une 1,3-propanediol déshydrogénase de Clostridium butyricum. De manière préférée, la 1,3-propanediol déshydrogénase est un polypeptide ayant au moins 80% d'identité en aminoacides avec le polypeptide de séquence SEQ ID N 8 . De manière tout à fait avantageuse, l'invention concerne aussi un polypeptide ayant au moins 85%, 90%, 95% ou 99% d'identité en aminoacides avec le polypeptide de séquence SEQ ID N 8. Une caractéristique essentielle du procédé selon l'invention est que l'étape de culture du micro-organisme recombinant est effectuée en l'absence de coenzyme B12 ou de l'un de ses précurseurs. Selon encore un autre aspect, le procédé est en outre caractérisé en ce que la source carbonée est choisie parmi les osides et les polyols. L'oside peut être par exemple le glucose. Le polyol peut être par exemple le glycérol. Préférentiellement, le procédé selon l'invention est mis en oeuvre avec un micro-organisme choisi parmi les micro-organismes ne produisant pas naturellement le coenzyme B12 ou l'un de ses précurseurs. Un tel micro-organisme peut être une bactérie appartenant au genre Clostridium ou Escherichia. Il peut s'agir également d'une levure de l'espèce Saccharomyces cerevisiae. Selon un mode de réalisation particulier, le procédé est en outre caractérisé en ce que le micro-organisme recombinant comprend également des acides nucléiques codant respectivement une glycérol-3-phosphate déshydrogénase et une glycérol-3-phosphatase, auquel cas le micro-organisme recombinant est capable de convertir à haut rendement une source carbonée telle que le glucose en 1,3-propanediol . L'invention a en outre pour objet un acide nucléique comprenant tout ou partie d'un polynucléotide codant pour au moins une sous-unité d'une glycérol déshydratase dont l'activité catalytique est indépendante de la présence de coenzyme B12 ou de l'un de ses précurseurs. De préférence, un acide nucléique selon l'invention se présente sous une forme purifiée ou isolée. Un tel polynucléotide aura préférentiellement au moins 50% d'identité en nucléotides avec le polynucléotide de séquences SEQ ID N 1 ou SEQ ID N 2. Un polynucléotide de séquence complémentaire aux polynucléotides de séquences SEQ ID N 1 ou SEQ ID N 2 constitue également un objet de l'invention. Font également partie de l'invention des acides nucléiques comprenant tout ou partie d'un polynucléotide possédant au moins 60%, 65%, 70%, 75%, 85%, 90%, 95%, 98%, 99%, 99,5% ou encore 99,8% d'identité en nucléotides avec la séquence nucléotidique de l'un quelconque des acides nucléiques dont les séquences sont définies dans la présente description, ou un acide nucléique de séquence complémentaire. Le terme isolé au sens de la présente invention désigne un matériel biologique qui a été soustrait à son environnement originel (l'environnement dans lequel il est localisé naturellement). Par exemple, un polynucléotide présent à l'état naturel dans une plante ou un animal n'est pas isolé. Le même polynucléotide séparé des acides nucléiques adjacents au sein desquels il est naturellement inséré dans le génome de la plante ou de l'animal est isolé. Un tel polynucléotide peut être inclus dans un vecteur et/ou un tel polynucléotide peut être inclus dans une composition et demeurer néanmoins à l'état isolé du fait que le vecteur ou la composition ne constitue pas son environnement naturel. Le terme purifié ne nécessite pas que le matériel soit présent sous une forme de pureté absolue, exclusif de la présence d'autres composés. Il s'agit plutôt d'une définition relative. Un polynucléotide est à l'état purifié après purification du matériel de départ ou du matériel naturel d'au moins un ordre de grandeur, de préférence deux ou trois et préférentiellement quatre ou cinq ordres de grandeur. Aux fins de la présente description, l'expression séquence nucléotique peut être employée pour désigner indifféremment un polynucléotide ou un acide nucléique. L'expression séquence nucléotidique englobe le matériel génétique lui-même et n'est donc pas restreinte à l'information concernant sa séquence. L'invention est également relative à un acide nucléique codant pour les deux sous-unités protéiques de la glycérol déshydratase indépendante du coenzyme B12 de Clostridium butyricum. Préférentiellement, un tel acide nucléique est caractérisé en ce qu'il comprend un premier polynucléotide ayant au moins 50% d'identité en nucléotides avec le polynucléotide de séquence SEQ ID N 1 et un second polynucléotide ayant au moins 50% d'identité en nucléotides avec le polynucléotide de séquence SEQ ID N 2. Selon un mode de réalisation particulier, un tel acide nucléique codant pour les deux sous-unités protéiques de la glycérol déshydratase indépendante du coenzyme B12 comprendra en outre une séquence à fonction de promoteur, fonctionnelle dans la cellule hôte dans laquelle l'expression des polynucléotides codant pour les deux sous-unités de cette enzyme est recherchée. Une telle séquence nucléotidique promotrice de la transcription peut être la séquence promotrice SEQ ID N 3 ou une séquence ayant au moins 80% d'identité en nucléotides avec cette dernière. L'invention a également pour objet un acide nucléique à fonction de promoteur bactérien, notamment chez Clostridium butyricum, comprenant un polynucléotide ayant au moins 80% d'identité en nucléotides avec la séquence SEQ ID N 3, ou un polynucléotide de séquence complémentaire. Comme déjà mentionné plus haut, une organisation en opéron unique permet, chez la bactérie Clostridium butyricum, la synthèse d'un produit de transcription (ARN messager) comprenant à la fois les séquences codant pour les deux sous-unités protéiques de la glycérol déshydratase indépendante du coenzyme B12, qui catalyse la transformation du glycérol en 3hydroxypropionaldéhyde (3-HPA) et la 1,3-propanediol déshydrogénase (DHAT) qui catalyse la transformation du 3-HPA en 1,3-propanediol. L'invention concerne donc également un acide nucléique comprenant tout ou partie d'un polynucléotide codant une 1,3-propanediol déshydrogénase ayant au moins 80% d'identité en nucléotides avec le polynucléotide de séquence SEQ ID N 4, ou un polynucléotide séquence complémentaire. Dans un mode de réalisation particulier d'un acide nucléique purifié ou isolé selon l'invention, il peut être avantageux de pouvoir inclure dans une même séquence les acides nucléiques codant respectivement pour les deux sous-unités protéiques de la glycérol déshydrogénase et pour la 1,3-propanediol déshydrogénase, un tel acide nucléique codant alors pour les deux enzymes susceptibles de catalyser la totalité des étapes de bioconversion du glycérol en 1,3-propanediol. En conséquence, l'invention est également relative à un acide nucléique comprenant, de l'extrémité 5' vers l'extrémité 3' : a) un premier acide nucléique caractérisé en ce qu'il comprend un premier polynucléotide ayant au moins 50% d'identité en nucléotides avec le polynucléotide de séquence SEQ ID N 1 et un second polynucléotide ayant au moins 50% d'identité en nucléotides avec le polynucléotide de séquence SEQ ID N 2; b) un second acide nucléique comprenant un polynucléotide codant une 1,3-propanediol déshydrogénase ayant au moins 80% d'identité en nucléotides avec le polynucléotide de séquence SEQ ID N 4 . Les séquences nucléotidiques codant respectivement pour la glycérol déshydratase et la 1,3-propanediol déshydrogénase de l'acide nucléique cidessus décrit, pourront en outre être avantageusement placées sous le contrôle d'une séquence promotrice appropriée, telle que la séquence SEQ ID N 3 ou de toute autre séquence promotrice fonctionnelle dans la cellule hôte dans laquelle leur expression est recherchée. Un acide nucléique répondant à la définition ci-dessus est par exemple le polynucléotide de séquence SEQ ID N 5 ou encore un polynucléotide ayant au moins 50% d'identité en nucléotides avec le polynucléotide de séquence SEQ ID N 5. L'acide nucléique de séquence SEQ ID N 5 comprend les éléments fonctionnels caractéristiques suivants: a) un terminateur de transcription d'une région codante localisée en amont de l'opéron 1,3-propanediol dans le génome de Clostridium butyricum. Ce motif terminateur de transcription possède une structure en épingle à cheveux centré sur le nucléotide en position 27 de la séquence SEQ ID N 5 (AG = - 25,2 kcal/mol) qui comprend une tige 19 pb, les deux brins de la tige étant constitués respectivement des nucléotides en positions 5 à 23 et des nucléotides en positions 30 à 48 de la séquence SEQ ID N 5, la boucle de la structure en épingle à cheveux étant constituée par les nucléotides en positions 24 à 29 de la séquence SEQ ID N 5. Ce motif terminateur de transcription est suivi de la séquence ATTTT. b) Promoteur de l'opéron 1,3-propanediol. Le promoteur de l'opéron 1,3-propanediol est localisé du nucléotide en position 100 au nucléotide en position 200 de la séquence SEQ ID N 5. Ce promoteur comprend une boîte (-35) de séquence TAGATA localisée du nucléotide en position-142 au nucléotide en position 147 de la séquence SEQ ID N 5. Ce promoteur comprend également une boîte (-10) de séquence TATTAT localisée du nucléotide en position 164 au nucléotide en position 169 de la séquence SEQ ID N 5, la distance entre les boîtes-35 et les boîtes -10 étant de 16 pb. c) orf11(séquence codant pour la première sous-unité de la glycérol déshydrogénase. Il s'agit d'une phase de lecture ouverte unique de 2. 361 pb codant pour le polypeptide ORF11de 787 acides aminés de séquence SEQ ID N 6. Le codon d'initiation ATG est localisé du nucléotide en position 313 au nucléotide en position 315 de la séquence SEQ ID N 5. Le cadre ouvert de lecture se termine par un codon stop de séquence TAA localisée du nucléotide en position 2674 au nucléotide en position 2676 de la séquence SEQ ID N 5. En outre, un site de fixation au ribosome de séquence GAGGAG précède le codon d'initiation et est localisé du nucléotide en position 302 au nucléotide en position 307 de la séquence SEQ ID N 5. d) orf12 (séquence codant pour la seconde sous-unité de la glycérol déshydrogénase). Il s'agit d'un cadre de lecture ouvert unique de 912 pb codant pour un polypeptide de 304 acides aminés de séquence SEQ ID N 7. Le codon d'initiation de séquence ATG est localisé du nucléotide en position 2704 au nucléotide en position 2706 de la séquence SEQ ID N 5. Le cadre de lecture ouvert s'achève par un codon stop de séquence TAA localisée entre les nucléotides en position 3616 et le nucléotide en position 3618 de la séquence SEQ ID N 5. En outre, un site de fixation du ribosome de séquence AAGGGGA précède le codon d'initiation et est localisé du nucléotide en position 2689 au nucléotide en position 2695 de la séquence SEQ ID N 5. e) dhat (séquence codant pour la 1,3-propanediol déshydrogénase) . Il s'agit d'une phase de lecture ouverte unique de 1155 pb codant pour un polypeptide de 385 acides aminés de séquence SEQ ID N 8. Le codon d'initiation de séquence ATG est localisé du nucléotide en position 3678 au nucléotide en position 3680 de la séquence SEQ ID N 5 La phase de lecture ouverte se termine par un codon stop de séquence TAA localisé du nucléotide en position 4833 au nucléotide en position 4835 de la séquence SEQ ID N 5. En outre, un site de fixation du ribosome de séquence AGGAGA précède le codon d'initiation et est localisé du nucléotide en position 3663 au nucléotide en position 3668 de la séquence SEQ ID N 5. f) Terminateur de transcription de l'opéron 1,3-propanediol. Le terminateur de transcription de l'opéron 1,3-propanediol possède une structure en épingle à cheveux centrée sur le nucléotide en position 4933 de la séquence SEQ ID N 5 (AG =-27,4 kcal/mol) et comprend une tige de 22 pb constituée respectivement des nucléotides localisés en positions 4909 à 4930 de la séquence SEQ ID N 5 et des nucléotides localisés de la position 4936 à 4957 de la séquence SEQ ID N 5. La boucle de l'épingle à cheveux est constituée de la séquence allant du nucléotide en position 4931 au nucléotide en position 4935 de la séquence SEQ ID N 5. La structure en épingle à cheveux est suivie de la séquence TATTTTAATT. Chacune des séquences fonctionnelles comprise dans l'opéron 1,3propanediol de séquence SEQ ID N 5, tel que décrit ci-dessus, peut être mise en oeuvre individuellement, par exemple par insertion dans un vecteur de clonage et/ou d'expression, qu'il s'agisse de l'une des régions codant pour un polypeptide de l'invention ou encore d'une région régulatrice (promoteur ou terminateur de transcription). De telles séquences nucléotidiques d'intérêt peuvent être obtenues selon des techniques bien connues de l'homme du métier telles que l'utilisation d'enzymes de restriction, dont l'utilisation est décrite en détail dans l'ouvrage de SAMBROOK et al. (1989) ou encore par amplification sélective de la séquence cible d'intérêt, par exemple par PCR. Font également partie de l'invention les acides nucléiques hybridant, dans des conditions d'hybridation de forte stringence, avec un acide nucléique choisi parmi les séquences nucléotidiques SEQ ID N 1 à SEQ ID N 5. Par conditions d'hybridation de forte stringence au sens de la présente invention, on entend les conditions d'hybridation suivantes: - préhybridation des filtres pendant 8 heures à 65 C dans un tampon composé de 6 x SSC, 50 mM Tris-HCI (pH 7,5), 1 mM EDTA, 0,02% PVP, 0,02% FICOLL, 0,02% SAB et 500 g/ml d'ADN de sperme de saumon dénaturé; - hybridation des filtres pendant 48 heures à 65 C en présence de tampon 1 x SSC correspondant à 0,15 M de NaCI et 0,05 M de citrate de sodium; - trois lavages des filtres dans une solution contenant un tampon 2 x SSC et 0,1 % SDS à 68 C pendant 15'. Les conditions de forte stringence définies ci-dessus sont adaptées à l'hybridation d'une molécule d'acide nucléique d'une longueur de 20 nucléotides. Il va sans dire que ces conditions d'hybridation doivent être adaptées en fonction de la longueur de l'acide nucléique dont l'hybridation est recherchée, selon des techniques bien connues de l'homme du métier. Les conditions convenables d'hybridation peuvent par exemple être adaptées selon l'enseignement contenu dans l'ouvrage de HAMES & HIGGINS (1985) ou encore dans l'ouvrage de SAMBROOK et al; (1989). Font également partie de l'invention les acides nucléiques comprenant au moins 20 nucléotides consécutifs d'un polynucléotide choisi parmi les séquences nucléotidiques SEQ ID N 1 à SEQ ID N 5. De tels acides nucléiques comprennent avantageusement 20,25, 30,35, 40,50, 100,150, 200 à 250,300, 400,500 nucléotides consécutifs d'un polynucléotide choisi parmi les séquences nucléotidiques SEQ ID N 1 à SEQ ID N 5. De tels acides nucléiques peuvent comprendre par exemple 20,25, 30, 35,40, 50,100, 150,200, 250,300, 400 ou 500 nucléotides consécutifs d'un polynucléotide choisi parmi les séquences nucléotidiques SEQ ID N 1 à SEQ ID N 5. De tels acides nucléiques peuvent être notamment utiles en tant que sondes ou amorces nucléotidiques afin de détecter la présence de l'une quelconque des séquences nucléotidiques de SEQ ID N 1 à SEQ ID N 5 dans un échantillon. De telles sondes ou amorces nucléotidiques peuvent être notamment utiles afin de mesurer l'expression de l'un quelconque des produits de transcription des régions codantes orf11, orf12 ou dhat selon des techniques bien connues de l'homme du métier. Afin d'améliorer encore la capacité des hôtes cellulaires transformés avec un acide nucléique selon l'invention à produire le 1,3 propanediol à partir de glucose, un tel hôte cellulaire recombinant pourra en outre être transformé avec un ou plusieurs gènes codant pour une ou plusieurs enzymes aptes à catalyser la transformation du glucose en glycérol. Un couple d'enzymes capable d'effectuer la transformation du glucose en glycérol est par exemple une glycérol-3-phosphate déshydrogénase et une glycérol-3-phosphatase. Ainsi, un acide nucléique selon l'invention pourra comprendre, outre les séquences codant respectivement pour la glycérol déshydratase indépendante du coenzyme B12 et la 1,3-propanediol déshydrogénase (dhaT), un troisième acide nucléique codant pour une glycérol-3-phosphate déshydrogénase et un quatrième acide nucléique codant pour une glycérol-3-phosphatase. Pourront être employés en particulier un acide nucléique codant pour la gpd1 glycérol-3-phosphate déshydrogénase et un quatrième acide nucléique codant pour la gpp2 glycérol-3-phosphatase. La gpd1 est par exemple décrite par LARSSON et al. (1993). Mol. Microbiol., 10,1101-1111. La gpd2 est par exemple décrite par HIRAYAMA et al. (1995). Mol. Gen. Genet., 249, 127-138. Selon encore un autre aspect, l'invention concerne un vecteur recombinant de clonage et/ou d'expression comprenant un acide nucléique codant pour une glycérol déshydratase indépendante du coenzyme B12 ou une 1,3-propanediol déshydrogénase selon l'invention. Un tel vecteur recombinant comprendra avantageusement une séquence promotrice , constitutive ou inductible, capable de diriger l'expression de la glycérol déshydratase indépendante du coenzyme B12 et/ou de la 1,3propanediol déshydrogénase et un terminateur de transcription Rho-indépendant. Il peut s'agir par exemple d'un vecteur navette capable de se répliquer dans différents hôtes cellulaires. Un premier vecteur recombinant préféré selon l'invention est le plasmide pSPD5 contenu dans la souche de Escherichia coli déposée à la Collection National de Cultures de Microorganismes (CNCM) le 24 Juin 1999 sous le n d'accès I-2243. D'autres vecteurs préférés selon l'invention sont par exemple les suivants : # les vecteurs pTPG (-) etpOPG représentés aux figures 3 et 4. # Les vecteurs pSGD et pPPF2 représentés aux figures 5 et 6; # des vecteurs possédant le réplicon du pCB101, tel que le vecteur pCTC511 (WILLIAMS et al., 1990) ou encore le vecteur pSYSL2 (LEE et al., 1992), # un vecteur navette portant le réplicon pAM1 d'Enterococus faecalis DS-5, tel que le vecteur pCTC41 (WILLIAMS et al., 1990); # les vecteurs navettes E.coli B. Subtilis/C. acetobutylicum désignés pKNT11et pKNT14 (TRUFFAUT et al., 1989); L'invention concerne également une cellule hôte recombinante comprenant un acide nucléique ou un vecteur recombinant selon l'invention. Une telle cellule hôte recombinante comprend avantageusement un acide nucléique codant pour la glycérol déshydratase indépendante du coenzyme B12 ou encore un vecteur contenant un tel acide nucléique. De préférence, une telle cellule hôte recombinante comprendra un acide nucléique codant à la fois pour les deux sous-unités protéiques de la glycérol déshydratase indépendante du coenzyme B12 ainsi que pour la DHAT. Il peut s'agir indifféremment d'une bactérie, d'un champignon ou d'une levure. Une cellule hôte recombinante bactérienne sera choisie préférentiellement parmi Escherichia coli, Clostridium ou encore Bacillus, lactobacillus et lactococcus. Une cellule de levure recombinante selon l'invention sera préférentiellement de la souche Saccharomyces cerevisiae. Une cellule hôte recombinante préférée selon l'invention est la souche de Escherichia coli déposée à la Collection Nationale de Cultures de Microorganismes (CNCM) le 24 Juin 1999 sous le n d'accès I-2243. L'invention a également pour objet les polypeptides constituant respectivement l'une et l'autre des deux sous-unités protéiques constitutives de la glycérol déshydratase dimérique indépendante du coenzyme B12 selon l'invention. De préférence, un polypeptide selon l'invention se présente sous une forme isolée ou purifiée. L'invention se rapporte également à un polypeptide constituant l'enzyme 1,3-propanediol déshydrogénase de Clostridium butyricum. Plus particulièrement, l'invention a trait à un polypeptide comprenant tout ou partie d'une séquence d'acides aminés ayant au moins 50% d'identité en acides aminés avec la séquence SEQ ID N 6 ou SEQ ID N 7. L'invention concerne également une protéine dimérique composé d'un premier polypeptide ayant au moins 50% d'identité en aminoacides avec le polypeptide de séquence SEQ ID N 6 et d'un second polypeptide ayant au moins 50% d'identité en aminoacides avec le polypeptide de séquence SEQ ID N 7. De manière tout à fait préférée, un tel polypeptide présente une activité catalytique glycérol déshydratase ne nécessitant pas la présence du coenzyme B12, une telle activité catalytique pouvant être mesurée conformément aux exemples. Un autre objet de l'invention consiste en un polypeptide comprenant tout ou partie d'une séquence d'acides aminés ayant au moins 80% d'identité en acides aminés avec la séquence SEQ ID N 8. De manière tout à fait préférée, un tel polypeptide présente une activité catalytique de 1,3-propanediol déshydrogénase. L'invention est également relative à un procédé de production d'un polypeptide selon l'invention, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes : a) préparation d'un vecteur d'expression recombinant selon l'invention ; b) introduction du vecteur d'expression recombinant de l'étape a) dans une cellule hôte appropriée; c) culture de la cellule hôte recombinante de l'étape b) dans un milieu de culture approprié; d) récupération du polypeptide recombinant produit dans le surnageant de culture ou dans le lysat cellulaire; e) le cas échéant, purification du polypeptide récupéré. Les polypeptides selon l'invention peuvent être purifiés par exemple par passage sur une colonne de chromatographie d'affinité à ions nickel ou cuivre. Ces polypeptides peuvent en outre être caractérisés par leur activité enzymatique glycérol déshydratase ou 1,3-propanediol déshydrogénase, comme indiqué dans les exemples. Les polypeptides selon l'invention peuvent aussi être purifiés par exemple par chromatographique liquide à haute performance tels que des chromatographies HPLC en phase inverse et/ou d'échange cationique. Font également partie de l'invention les polypeptides comprenant des modifications d'acides aminés allant de 1,2, 3 , 4,5, 10 à 20 substitutions, additions ou délétions d'un acide aminé par rapport à la séquence de l'une ou l'autre des deux sous-unités protéiques de la glycérol déshydratase indépendante du coenzyme B12 ou de la 1,3-propanediol déshydrogénase . De manière tout à fait préférée, les modifications d'acides aminés dans un polypeptide de l'invention, par rapport aux polypeptides de référence, n'induiront pas de changement important de leur activité biologique. Ainsi, les modifications dans la séquence d'acides aminés des sous-unités protéiques de la glycérol déshydratase indépendante du coenzyme B12 selon l'invention seront tels que l'activité catalytique sera au moins égale à 50% de l'activité catalytique initiale et sera de préférence améliorée par rapport à l'activité catalytique initiale. Il en est de même pour les modifications d'acides aminés dans la séquence protéique de la 1,3-propanediol déshydrogénase selon l'invention. L'un quelconque des polypeptides selon l'invention ou encore un fragment peptidique de celui-ci peuvent être utilisés pour la préparation d'anticorps dirigés spécifiquement contre ce dernier. Constitue également un objet de l'invention un polypeptide comprenant au moins 20 acides aminés consécutifs d'une séquence d'acides aminés choisie parmi les séquences SEQ ID N 6 à SEQ ID N 8. Avantageusement, un tel polypeptide comprendra de 20,25, 30,35, 40, 45,50, 75 à 100,125, 150 ou 200 acides aminés consécutifs d'un polypeptide choisi parmi les séquences SEQ ID N 6 à SEQ ID N 8. Préférentiellement, un tel polypeptide comprendra 20,25, 30,35, 40,45, 50,60, 70,80, 90,100, 125,150, 175,200, 250 ou 300 acides aminés consécutifs d'un polypeptide choisi parmi les séquences d'acides aminés SEQ ID N 6 à SEQ ID N 8, De tels anticorps spécifiques peuvent être utilisés dans des tests d'immunodétection permettant de déterminer la présence d'une glycérol déshydratase indépendante du coenzyme B12 ou d'une 1,3-propanediol déshydrogénase dans un échantillon. Un tel test d'immunodétection représente une alternative à la détermination de l'activité glycérol déshydratase ou 1,3-propanediol déshydrogénase dans un échantillon suspecté de contenir ces enzymes. Par anticorps au sens de l'invention, on entendra les anticorps polyclonaux mais aussi des anticorps monoclonaux tels que préparés à partir d'hybridomes selon la technique décrite par KOHLER & MILSTEIN (1975). Constituent également des anticorps au sens de la présente invention, des fragments d'anticorps (Fab', F (ab')2 ainsi que des fragments d'anticorps simple chaîne Fv (brevet US N 4,946,778; MARTINEAU et al., (1998)) ou encore des anticorps humanisés (REINMANN et al. , 1997 ; LEGER et al. 1997). L'invention sera en outre illustrée, sans pour autant être limitée, par les figures et les exemples suivants. La figure 1 représente un schéma de la voie métabolique de bioconversion du glycérol en 1,3-propanediol chez la bactérie Clostridium butyricum. La figure 2 illustre la construction du vecteur pSPD5 . La figure 3 illustre la construction du vecteur pTPG (-). La figure 4 illustre la construction du vecteur pOPG. La figure 5 illustre la construction du vecteur pSGD. La figure 6 illustre la construction du vecteur pPPD2. La figure 7 illustre la production de 1,3-propanediol à partir du glycérol par la souche de Clostridium acetobutylicum DG1 (pSPD5). La figure 8 illustre la production de 1,3-propanediol à partir du glycérol par la souche de E. coli DH5a transformée par le vecteur pSPD5 et cultivée en anaérobiose. La figure 9 illustre la production de 1,3-propanediol à partir du glycérol par la souche non recombinée de Clostridium butyricum VPI 1718. La figure 10 illustre la production de 1,3-propanediol à partir de glucose par la souche de C-acetobutylicum DG1 [pSPD5]. MATERIELS ET METHODES. I. CULTURE DES SOUCHES 1. Souche utilisée La souche de Clostridium butyricum à partir de laquelle ont été isolées et caractérisées les différentes séquences d'acides nucléiques selon l'invention est la souche VPI 1718. La souche de Clostridium acétobutylicum utilisée pour la transformation avec les différents vecteurs décrits dans les exemples est la souche disponible à l'American Type Culture Collection sous le n ATCC 824. La souche de Escherichia coli DH5a utilisée pour la transfection avec les différents plasmides décrits dans les exemples est la souche disponible à LIFE TECHNOLOGIES Inc. 2. Les plasmides. Le plasmide pUC18, d'une taille de 2,7kb est décrit par YANNISCHPERRON et al. (1985). Le plasmide pIMPI, d'une taille de 4,9 kb est décrit par MERMELSTEIN (1992). Le plasmide pSOS95, d'une taille de 7 kb est décrit par SOUCAILLE et PAPOUTSAKIS (1996). 3. Milieux et conditions de culture Pour la culture de la souche d'Escherichia coli, le milieu LB (décrit dans SAMBROOK et al., 1989) est supplémenté avec des antibiotiques (ampicilline à 100 g/ml, érythromycine à 300 g/ml, chloramphénicol à 35 pglml). Les cultures des souches Clostridium, en particulier des souches de Clostridium butyricum ou des souches de Clostridium acetobutylicum DGI transformées par le vecteur pSPD5 ont été réalisées dans le milieu suivant, dont la composition est donnée pour 1 litre de milieu de culture: extrait de levure 4g glycérol 60g KH2P04 0,5g K2HP04 0,5g MgS04 0,2g NH4CI 1,5g FeS04 10 mg biotine 0,04 mg acide paraaminobenzoïque 8 mg Le pH est ajusté à 6 par addition d'ammonium et la température de croissance est de 37 C. La clarithromycine est ajoutée à une concentration de 40 mg/l pour la culture de la souche C. acetobutylicum D61 (pSPP5). Il. TECHNIQUES ANALYTIQUES. 1. Dosage des substrats et des produits. L'ensemble des substrats (glucose et glycérol) et des produits (acétate, butyrate, lactate, 1,3-propanediol) sont dosés par chromatographie liquide à haute performance (CLHP). L'appareil CLHP (pompe modèle 5810, Waters) est muni d'un passeur automatique (SP 8775, Spectra Physic. ) possédant une boucle d'injection de 20 pl, d'un intégrateur (Intersmat ICR 1 B, Shimadzu) et d'un réfractomètre (HP 1047A) . La séparation est obtenue par passage sur une colonne à exclusion d'ions (Aminex R HPX-87H, 300 mm x 7,8 mm, Biorad) équipée d'une précolonne (Micro-Guard, Biorad) garnie de la même résine ionique H+. La phase mobile est constituée par de l'acide sulfurique à 0,031 mM, le flux est de 0,7 ml par minute et la séparation est réalisée à température ambiante. 2. Dosage des activités. a) Dosage de la 1,3-propanediol déshydrogénase. Le dosage de la 1,3-propanediol déshydrogénase a été réalisé dans un volume de 1 ml du milieu réactionnel suivant : 1,3-propanediol 100 mM NAD+ 2mM DTT 2 mM (NH4)2S04 30 mM K2C03100 mM extrait cellulaire: essais sur 5 pl, 10 pl, 50 l H20 complété à 1 ml La réduction du NAD+ est suivie par la mesure de la densité optique à la longueur d'onde de 340 nanomètres. Le coefficient d'extinction s(NADH) est de 6,22 mM-1 x cm-1. b) Dosage de la glycérol déshydratase Le dosage de la glycérol déshydratase est réalisé sur un extrait cellulaire préalablement passé sur une colonne de désalage. Ce dosage est réalisé dans un volume 1 ml du milieu réactionnel suivant : KCI 0,05 M 1,2-propanediol 0,06 M tampon KP04 pH7 0,035 M extrait cellulaire essai sur 5 pl, 10 l, 20 pl, 30 l. H20 complété à 1 ml La réaction est arrêtée après 10 minutes à 37 C à l'aide de 1 ml de tampon citrate à 100 mM pH 3,6 et 500 l de MBTH à 0,1%. Après 15 minutes à 37 C, 1 ml d'eau est ajouté et le taux de propionaldéhyde formé est déterminé par mesure de la densité optique à la longueur d'onde de 305 nanomètres. Le coefficient d'extinction molaire pour le produit formé est de 13,3 x 103 M-1 x cm-1. c) Mesure de la biomasse La croissance bactérienne est suivie par la mesure, dans des fractions aliquotes prélevées à des temps déterminés, de la densité optique à la longueur d'onde de 620 nanomètres pour un trajet optique de 1 cm. Il est considéré qu'une unité de densité optique correspond à environ 3x108 bactéries/ml. III. Transformation des bactéries avec les vecteurs recombinants selon l'invention. 111.1. Transformation d'E, coli DH5[alpha] La souche d'E. coli DH5a est rendue compétente selon le protocole établi par INOUE ef al. (1990). Ce protocole permet d'obtenir des efficacités de transformation de l'ordre de 108 à 109 transformants/mg de pUC18. Les cellules rendues compétentes sont ensuite conservées à -80 C. La transformation des cellules compétentes par un plasmide est réalisée par choc thermique (SAMBROOK et al., 1989). III. 2. Transformation de C. acetobutvlicum Le plasmide à introduire dans C. acetobutylicum (ATCC 824 ou DG1) doit être préalablement méthylé au niveau des sites Cac8241 (= Bsofl). La méthylation in vivo est réalisée en introduisant le plasmide à méthyler dans la souche E. coli ER 2275 portant le plasmide pAN1 (qui contient le gène codant pour la méthylase du phage f3TI de Bacillus subtilis). La préparation d'ADN plasmidique utilisée pour transformer C. acetobutylicum doit être très pure, purifiée par ultracentrifugation sur gradient de chlorure de césium (SAMBROOK et al., 1989) ou en utilisant la trousse Qiafilter Plasmid Midiprep (QIAGEN). Les transformations sont réalisées en anaérobiose stricte selon le protocole suivant, adapté de celui de MEMMERLSTEIN (1992). Les efficacités sont encore très faibles, de l'ordre de 102 transformants par mg d'ADN. A partir d'une préculture en milieu CGM (10ml) à 37 C sur une nuit, Inoculer à 10% 50 ml de milieu 2YTG. Arrêter la culture à D0600 de 1,0 à 1,2. A partir de ce moment, l'ensemble des manipulations sont réalisées dans la hotte anaérobie et dans la glace. Centrifuger les cellules pendant 10 min à 4000 g. Laver le culot cellulaire dans 10 ml de tampon d'électroporation. Centrifuger 10 min à 3000-4000 g. Resuspendre les cellules dans 500 ml de tampon d'électroporation. La suspension de cellules est mise en contact avec le plasmide (5 à 10 mg d'ADN plasmidique dissout dans 5 à 50 ml de tampon TE) préalablement introduit dans la cuvette d'électroporation (de 0,4cm d'épaisseur). Le tout est conservé dans la glace. Le mélange est immédiatement soumis à une décharge électrique avec les paramètres suivants : V = 2500V, C = 25 mF, et R infinie (BioRad Gene pulser Il et Gene controller Il) Dans ces conditions, le temps de la décharge délivrée varie de 7 à 12 ms. Les cellules sont ensuite immédiatement transférées dans 10 ml de milieu 2 YTG et mises à incuber à 37 C jusqu'à reprise du métabolisme (formation de bulles de dioxyde de carbone et d'hydrogène). La culture est alors centrifugée et le culot cellulaire repris dans un volume minimal du même milieu. La suspension est ensuite étalée sur milieu RCA avec antibiotique. Composition du tampon d'électroporation : Saccharose 270 mM Tampon phosphate (Na2HP04/NaH2P04), pH 7. 4 3 mM EXEMPLE 1 : du vecteur d'expression pSPD5. Les amorces nucléotidiques suivantes ont été synthétisées, afin d'amplifier une séquence nucléotidique contenant à la fois orf11, orfl2 et dhaT, c'est-à-dire l'ensemble des séquences codant à la fois pour les deux sous-unités protéiques de la glycérol déshydratase indépendante du coenzyme B12 et de la 1,3-propanediol déshydrogénase de Clostridium butyricum. L'amorce PDH3 (SEQ ID N 9) inclut le site BamHI, le site de liaison aux ribosomes et le début de l'orf11. L'amorce PDH4 (SEQ ID N 10) hybride avec le brin complémentaire et renferme le site Smal et la fin du gène dhaT. Une réaction d'amplification avec les amorces pDH3 et pDH4 a été réalisée sur l'ADN génomique de Clostridium butyricum aux conditions suivantes: # température d'appariement des amorces : 55 C;* durée d'élongation: 4 minutes; * nombre de cycles : 15 cycles. La réaction d'amplification a été réalisée avec la trousse Expand Long Template PCR (commercialisée par Boehringer). Cette réaction a permis d'amplifier un fragment de la taille attendue de 4,6 kb. Ce fragment amplifié a été purifié sur gel d'agarose puis digéré par les enzymes BamHI et Smal. En parallèle, le fragment BamHI-Ehel de 4970 pb du vecteur navette E.coli/ C. acetobutylicum pSOS95 a été purifié sur gel d'agarose puis ligaturé avec le produit PCR de 4,6 kb. Le vecteur recombinant ainsi construit, appelé pSPD5 (figure 2), permet l'expression constitutive des gènes orf11, orf12 et dhaT sous le contrôle du promoteur du gène de la thiolase de C. acetobutylicum. EXEMPLE 2 : des vecteurs d'expression pTPG (-) etpOPG Les vecteurs pTPG (-) etpOPG sont des vecteurs dérivés du vecteur navette E. coli-Clostridium pTLH1 (HARRIS et al., 1999) qui permettent à une cellule hôte adéquate de réaliser la conversion directe du glucose en 1,3- propanediol. Essentiellement, ils permettent l'expression des gènes o/f11, orf12 et dhaT de C. butyricum (opéron 1,3-propanediol) ainsi que celle des gènes GPD1 et GPD2 de S. cerevisae codant respectivement pour la glycérol-3-phosphate déshydrogénase et la glycérol-3-phosphatase (opéron artificiel gly, porté par le plasmide pS2 (GELIS et al., 1999), dérivé du plasmide pSOS95, qui permet chez E. coli et C. acetobutylicum la conversion du glucose en glycérol). Ces deux plasmides se différencient par l'organisation de ces gènes, en deux opérons (1,3-propanediol et gly) dans pTPG (-), et sur un même opéron dans pOPG. 2. 1. Construction de pTPG(-) Dans un premier temps, le fragment Sali de 4,9 kpb du plasmide pSPD5 contenant la totalité de l'opéron 1,3-propanediol a été purifié sur gel d'agarose puis ligaturé au vecteur-navette pTLH1 digéré par Sa/!, pour obtenir le plasmide pTLP de 10,6 kpb. En parallèle, les amorces nucléotidiques OPGLY-D et OPGLY-R ont été synthétisées afin d'amplifier la totalité de l'opéron artificiel gly. L'amorce OPGLY-D inclut le site Smal ainsi que le début de l'opéron artificiel gly. Sa séquence est la suivante : 5'-GTTACCCGGGGCTCCTGCAGCTCGACTTTTTAAC-3' L'amorce OPGLY-R hybride avec le brin complémentaire et inclut le site Smal ainsi que la fin de l'opéron artificiel gly. Sa séquence est la suivante : 5'-TTTCACCCGGGAAACAGCTATGACCATGATTACG-3' Une réaction d'amplification avec les amorces OPGLY-D et OPGLY-R a été réalisée sur le plasmide pS2, aux conditions suivantes : -température d'appariement des amorces : 48 C -durée d'élongation : 3,5 min -nombre de cycles : 10 La réaction a permis d'amplifier un fragment de la taille attendue de 2.2 kpb. Ce fragment amplifié a été purifié sur gel d'agarose et digéré par l'enzyme Smal, puis ligaturé au plasmide pTLP linéarisé par Smal pour fournir le plasmide pTPG (-) de 12,8 kpb (Figure 3). 2. 2. Construction de pOPG Dans un premier temps, le fragment Pvull-Pstl de 2,2 kpb du plasmide pS2 contenant la totalité de l'opéron glycérol a été purifié sur gel d'agarose puis ligaturé au fragment Smal-Pstl de 5,7 kpb du vecteur-navette pTLH1, pour obtenir le plasmide pTLG1 de 7,9 kpb. En parallèle, les amorces nucléotidiques dhaT-F et dhaT-R ont été synthétisées afin d'amplifier l'extrémité 5' du gène dhaT. L'amorce DHAT-F inclut le site BamHi ainsi que la région centrale du gène dhaT. Sa séquence est la suivante : 5'-TTGGATCCAGTATCTATAAATGATCCAATGC -3' L'amorce DHAT-R hybride avec le brin complémentaire et inclut le site Bglll ainsi que la fin du gène dhaT. Sa séquence est la suivante : 5'-TTAGATCTTTTAAATAGTATTAATTAATAAGCAGCC -3' Une réaction d'amplification avec les amorces dhaT-F et dhaT-R a été réalisée sur le plasmide pSPD5, aux conditions suivantes : -température d'appariement des amorces : 48 C -durée d'élongation : 1 min -nombre de cycles : 10 La réaction a permis d'amplifier un fragment de la taille attendue de 0,65 kpb. Ce fragment amplifié a été purifié sur gel d'agarose et digéré par les enzymes BamHl et BglII; puis ligaturé au plasmide pTLG1 linéarisé par BamHl pour fournir le plasmide pTPG de 8,55 kpb. Dans un dernier temps, le fragment BamHI-SbfI de 4,0 kpb du plasmide pSPD5 a été purifié sur gel d'agarose puis ligaturé au fragment BamHI-SbfI de 8,55 kpb du plasmide pTPG pour obtenir le plasmide pOPG de 12,55 kpb (Figure 4). EXEMPLE 3 : du vecteur d'expression pSGD Le vecteur pSGD est dérivé du plasmide pSPD5 . Essentiellement, le vecteur pSGD exprime fonctionnellement orf11 et orf12 (codant respectivement pour la première et la seconde sous-unités protéique de la glycérol déshydratase) et contient une délétion dans la région codant pour DHAT (1,3-propanediol déshydrogénase). Le vecteur pSPD5 a été soumis à une digestion par l'enzyme de restriction Sbfl et le fragment de 4082 pb purifié sur gel d'agarose. Il a ensuite été procédé à une digestion du vecteur pSOS95 par l'enzyme de restriction Pstl et le fragment de 4858 pb purifié sur gel d'agarose. Ces deux fragments ont ensuite été ligaturés afin d'obtenir le plasmide pSGD. EXEMPLE 4 : du vecteur d'expression pPPD2 Le vecteur pPPD2 est un vecteur dérivé du plasmide pSPD5 capable d'exprimer le gène dhat (codant pour la 1,3-propanediol déshydrogénase ) et dans lequel orf11(codant pour la première sous-unité de la glycérol déshydratase) a été complètement délété ainsi que 100 pb à l'extrémité 5' de orf12 (codant pour la seconde sous-unité de la glycérol déshydratase). Le vecteur pSPD5 a tout d'abord été digéré simultanément par les enzymes de restriction BamHl et Mfel. Le fragment BamHI-Mfel de 6326 pb obtenu par la double digestion à l'aide des endonucléases de restriction correspondantes a subi un traitement en présence de l'ADN polymérase T4 afin d'obtenir des extrémités franches. Le fragment a alors subi une religation sur lui-même afin d'obtenir le plasmide pPPD2. EXEMPLE 5 : de l'opéron 1,3-propanediol dans Clostridium acetobutylicum DG1 cultivé sur glycérol. La souche de Clostridium acétobutylicum DGI transformée avec le plasmide pSPD5 comme décrit dans la partie Matériels et Méthodes a été mise en culture en présence de glycérol pendant des temps déterminés et différents paramètres ont été suivis au cours de la fermentation : la croissance bactérienne a été suivie par mesure de la densité optique à la longueur d'onde de 620 nanomètres et est représentée sur la figure 6 par les cercles ouverts; - la concentration de glycérol a été suivie tout au long de la fermentation et est représentée sur la figure 7 par les carrés pleins; - la synthèse de 1,3-propanediol a été également suivie tout au long de la fermentation et est représentée par les cercles pleins; - de même la concentration d'acétate et de butyrate a été mesurée tout au long de la fermentation et est représentée sur la figure 7 respectivement par les triangles ouverts pointe en haut ou pointe en bas. Les résultats présentés à la figure 7 montrent qu'une quantité significative de 1,3-propanediol est synthétisée par la souche de Clostridium acetobutylicum DGI transformée par le plasmide pSPD5 dès les quatre premières heures de culture. Au bout de 20 heures de fermentation, il peut être observée la production de 38 g/l de 1,3-propanediol. La production de 1,3-propanediol atteint un plateau aux environs de 18 heures après le début de la fermentation, ce plateau de production étant essentiellement dû au fait que la presque totalité du glycérol initial a été consommée par la bactérie transformée. Il est important de noter que la souche C. acetobutylicum DG1 transformée par le plasmide de contrôle plMP1 ne contenant pas les régions codant pour la glycérol déshydratase et la 1,3-propanediol déshydrogénase (Memmerlstein, 1992) ne se développe pas sur le milieu de culture avec du glycérol comme seule source carbonée et donc ne produit pas de 1,3-propanediol (Tableau 1). EXEMPLE 6 : de l'opéron 1,3-propanediol dans Escherichia coli DH5a cultivé sur glycérol. Une souche d'Escherichia coli DH5[alpha] a été transformée avec le vecteur pSPD5, comme décrit dans la partie Matériels et Méthodes. La souche d'Escherichia coli transformée avec le plasmide pSPD5 a été mise en culture en anaérobiose sur milieu LB supplémenté en glycérol (40 g/l) et en érythromycine (300 g/ml), la production de 1,3-propanediol a été mesurée à des temps déterminés. Les résultats sont rassemblés sur la figure 8. Les résultats de la figure 8 montrent qu'une production significative de 1,3-propanediol est obtenue dès les premières heures de fermentation. Après 80 heures de fermentation, une production d'environ 4,5 g/l de 1,3-propanediol peut être observée. La souche de contrôle E. coli DH5[alpha][pIMP1] cultivée sur le même milieu ne conduit pas à la production de 1,3-propanediol (Tableau 1). TABLEAU 1 Production de 1,3-propanediol par des souches recombinantes cultivées à pH 6,5 en présence de glycérol dans des conditions anaérobies 1,3-propanediol (g/1) E. coli DH5[alpha] (pIMP1) 0 E. coli DH5[alpha] (pSPD5) 4,5 C. acetobutylicum DG1 (plMP1) pas de croissance C. acetobutylicum DG1 (pSPD5) 38 Les résultats du tableau 1 montrent qu'une production significative de 1,3-propanediol (environ 5gll) est obtenue avec la souche de Escherichia coli DH5a transfectée par le plasmide pSPD5, alors que la souche de E.coli transfectée avec le plasmide témoin pIMP1 ne produit pas de quantité détectable de 1,3-propanediol. Avec la construction pSPD5, une quantité de 1,3-propanediol environ 7,6 fois supérieure est observée avec la souche Clostridium acétobutylicum par rapport à la souche de Escherichia coli DH5a. Ceci est due majoritairement au fait que les signaux de régulation du plasmide pSPD5 ont été optimisés pour l'expression de l'opéron 1,3-propanediol dans Clostridium acetobutylicum. Des signaux de régulation, tels qu'un promoteur très actif chez Escherichia coli sont susceptibles de permettre l'obtention de quantité de 1,3propanediol aussi importante chez Escherichia coli que celle observée chez Clostridium acetobutylicum. EXEMPLE 7 : de l'opéron 1,3-propanediol dans Clostridium butyricum sauvage cultivé sur glycérol. La souche de Clostridium butyricum VPI 1718 a été mise en culture en présence de glycérol et la synthèse de 1,3-propanediol a été mesurée à des temps déterminés tout au long de la fermentation. Les résultats sont représentés à la figure 9. Les résultats de la figure 9 montrent qu'une production de 34 g/l de 1,3propanediol est observée au bout de 60 heures de fermentation. Si l'on se reporte aux résultats représentés sur la figure 7, on peut observer que la production de 1,3-propanediol par la souche de Clostridium acetobutylicum DG1 transformée par le plasmide pSPD5 est beaucoup plus rapide (22 heures contre 60 heures) et supérieure à la production de 1,3propanediol obtenue avec la souche de Clostridium butyricum exprimant naturellement la glycérol déshydratase indépendante du coenzyme B12 et la 1,3propanediol déshydrogénase selon l'invention. Par ailleurs, les niveaux d'activité catalytique, exprimés en unités par mg, de glycérol déshydratase et de 1,3-propanediol déhydrogénase ont été mesurés à la fois chez Clostridium acetobutylicum et chez Clostridium butyricum. * Les résultats sont représentés dans le tableau 2 DG1[pSPD5] ci-après. TABLEAU 2 Niveaux des enzymes impliquées dans la production de 1,3-propanediol dans les souches de C. acetobutylicum recombinantes et de C. butyricum Glycérol 1,3-propanediol déshydratase déshydrogénase (Ulmg) (U/mg) C.acetobutylicum 3,5 2,4 DG1(PSPD5) croissance sur glycérol C.acetobutylicum 0,01 0,005 DG1 (pIMP1) croissance sur glucose C.butyricum 0,45 0,56 croissance sur glycérol Les résultats présentés dans le tableau 2 indiquent que les niveaux d'activité de la glycérol déshydratase et de la 1,3-propanediol déshydrogénase exprimées dans la souche de Clostridium acetobutylicum transformée par le plasmide pSPD5 sont bien supérieurs (respectivement 7,8 et 4,3 fois supérieurs) aux niveaux d'activité glycérol déshydratase et 1,3-propanediol déshydrogénase exprimés par la souche de Clostridium butyricum produisant naturellement ces enzymes. Comme contrôle, une souche de Clostridium acétobutylicum transformée avec le plasmide pIMPI ne contenant pas les régions codant pour la glycérol déshydratase et la 1,3-propanediol déshydrogénase ne produit pas de quantité détectable de ces deux enzymes, ce qui montre clairement que l'activité observée chez la souche transformée par le plasmide pSPD5 est uniquement due à l'expression de l'opéron 1,3-propanediol selon l'invention. Les résultats présentés dans le tableau 2 démontrent clairement l'intérêt de transformer une souche de micro-organisme ne produisant pas naturellement la glycérol déshydratase et la 1,3-propanediol déshydrogénase selon l'invention avec un vecteur recombinant tel que le vecteur pSPD5 car il est possible dans ce cas, par exemple par l'emploi de promoteurs appropriés, d'obtenir des niveaux d'expression qui ne sont jamais atteints naturellement. Exemple 8 Expression des gènes de l'opéron 1,3 propanediol chez Saccharomyces cerevisiae cultivée sur glycérol. Les parties codantes des gènes orf11, orf12 et dhaT ont été individuellement amplifiées par PCR en introduisant au niveau des amorces un site Apal en partie 5' et Smal en partie 3'. Chaque gène a ensuite était introduit, grâce aux deux sites précédants, dans le vecteur pYGK (CROUX et SOUCAILLE, 1999) permettant de construire une cassette d'expression sous le contrôle du promoteur du gène PGK et du terminateur du gène CYCI. Les trois gènes dans leur cassette d'expression ont ensuite été sortis du vecteur par digestion NotISacll et introduit dans trois vecteurs centromériques de la famille pRS31X qui différent par la nature de leur marqueur de sélection (his3, trp1, ura3). Chacun des trois plasmides a ensuite était introduit dans la souche de S. cerevisiae YPH500 (ura3 lys2 ade2 trp1 his3 leu2) et sélectionné par complémentation de trois des auxotrophies de cette souche. CROUX et SOUCAILLE, 1999, Non publié. EXEMPLE 9: Expression de l'opéron 1,3-propanediol dans Clostridium acetobutylicum DG1 [pSPD5] cultivé sur glucose La souche Clostridium acetobutylicum DG1 transformée par le plasmide pSPD5 comme décrit dans la partie Matériels et Méthodes a été cultivée en présence de glucose comme seule source carbonée et différents paramètres ont été suivis au cours de la fermentation. Les résultats sont représentés sur la figure 10. Les résultats de la figure 10 montrent une synthèse, quoique faible (0,3 g/l) de 1,3-propanediol, alors que la totalité du glucose a été consommée. Cette production, due à la présence d'une faible concentration en glycérol intracellulaire chez Clostridium acetobutylicum DG1 [pSPD5] démontre toutefois la faisabilité d'un procédé de conversion directe du glucose en 1,3-propanediol dans une souche portant les gènes revendiqués par la présente invention. 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aaagaaaaat tcctaaatag tgttattatc tcatgcgaag ctgcaataac atatgtaaat 660 agatatgcta aaaaggctaa agagattgca gataatacaa gtgatgcaaa aagaaaagct 720 gaattaaatg aaatagcaaa aatttgttca aaagtttcag gagagggagc taaatctttc 780 tatgaagcat gtcaattatt ttggtttatt catgcaataa taaatataga atctaatgga 840 cattctattt ctccagctag atttgatcaa tacatgtatc catattatga aaatgataaa 900 aatataacag ataagtttgc tcaagaatta atagattgta tctggattaa attaaatgat 960 attaataaag taagagatga gatttcaact aaacattttg gtggttaccc aatgtatcaa 1020 aaattaattg ttgggggtca aaattcagaa ggaaaagatg caactaataa agtatcatat 1080 atggcattag aagcagctgt ccatgtaaag ttgcctcagc catctttgtc agtaagaata 1140 tggaataaga ctccagatga atttttgctt agagcagcag aattaactag agaagggtta 1200 ggacttcctg cttattataa tgatgaagtt attattccag cattagtttc tagaggtctt 1260 acattagaag atgcaagaga ctacggaata attggatgtg ttgaaccaca aaagccagga 1320 aaaacagaag gatggcatga ttcagcattc tttaatcttg caagaatagt agagttaact 1380 ataaattctg gatttgataa aaataaacag attggaccta aaactcaaaa ttttgaagaa 1440 atgaaatcct 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atagtgcaca gttcatttct ttagataaat ctattcaaaa tgatattatt 2340 gcaagaactg aacatgttat gtaa 2364 2 915 ADN Clostridium butyricum 2 atgagtaagg agataaaagg cgttttattt aacatacaaa aattttcgtt acatgatggg 60 cctggaataa gaactatagt attttttaag ggatgttcaa tgtcgtgctt atggtgcagt 120 aatccagaat cccaagatat taaacctcaa gtaatgttta ataaaaattt atgtacaaaa 180 tgtggaagat gtaaatctca atgtaaaagt gcaggtattg atatgaattc agaatatagg 240 atagataaaa gcaaatgtac agagtgtaca aaatgtgttg ataattgctt aagcggggca 300 cttgttattg aaggaaggaa ttacagtgtt gaagacgtta taaaggaatt gaaaaaagat 360 agtgttcaat atagaagatc aaacggtgga attacactat ctggagggga agtattactt 420 caaccagatt ttgcagtgga gcttttaaaa gagtgtaaat catatggctg gcacactgcc 480 attgaaacag caatgtatgt taatagtgaa tctgtaaaaa aagtaattcc atatatagat 540 ctggctatga ttgatataaa aagtatgaat gatgaaatcc ataggaaatt tacaggagtg 600 agtaacgaaa taatattaca aaacattaaa ttaagtgatg aattagctaa agaaataata 660 atcagaattc ctgtaataga aggatttaat gcagatttac aàagtatagg agcaatagct 720 caattttcaa aatcattaac aaatcttaaa 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atgcaatggc tcatcaatta gggggactgt 4500 atgatatggc acatggtgtt gctaatgcaa tgctattacc acatgttgaa cgttataata 4560 tgctatcaaa tcctaagaag tttgcagata tagcagaatt tatgggagaa aatatatctg 4620 gactttctgt aatggaagca gcagagaaag ccataaatgc aatgttcagg ctttcagagg 4680 atgttggaat tccgaaaagt ctaaaggaga tgggagtgaa acaagaagat tttgagcata 4740 tggcagaact agctctttta gatggaaatg cctttagcaatccaagaaaa ggaaatgcaa 4800 aagatattat aaatattttt aaggctgctt attaattaat actatttaaa ggattcaaag 4860 taaaagataa aagatatata tattagattt aagattttat tataggctaa caacaaagaa 4920 caagttaagt attaaactta gcttgttctt tgttgtttat ttt 4963 6 787 PRT Clostridium butyricum 6 Met Ile Ser Lys Gly Phe Ser Thr Gln Thr Glu Arg Ile Asn Ile Leu 1 5 10 15 Lys Ala Gln Ile Leu Asn Ala Lys Pro Cys Val Glu Ser Glu Arg Ala 20 25 30 Ile Leu Ile Thr Glu Ser Phe Lys Gln Thr Glu Gly Gln Pro Ala Ile 35 40 45 Leu Arg Arg Ala Leu Ala Leu Lys His Ile Leu Glu Asn Ile Pro Ile 50 55 60 Thr Ile Arg Asp Gln Glu Leu Ile Val Gly Ser Leu Thr Lys Glu Pro 65 70 75 80 Arg Ser Ser Gln Val Phe Pro Glu Phe Ser Asn Lys Trp Leu Gln Asp 85 90 95 Glu Leu Asp Arg Leu Asn Lys Arg Thr Gly Asp Ala Phe Gln Ile Ser 100 105 110 Glu Glu Ser Lys Glu Lys Leu Lys Asp Val Phe Glu Tyr Trp Asn Gly 115 120 125 Lys Thr Thr Ser Glu Leu Ala Thr Ser Tyr Met Thr Glu Glu Thr Arg 130 135 140 Glu Ala Val Asn Cys Glu Val Phe Thr Val Gly Asn Tyr Tyr Tyr Asn 145 150 155 160 Gly Val Gly His Val Ser Val Asp Tyr Gly Lys Val Leu Arg Val Gly 165 170 175 Phe Asn Gly Ile Ile Asn Glu Ala Lys Glu Gln Léu Glu Lys Asn Arg 180 185 190 Ser Ile Asp Pro Asp Phe Ile Lys Lys Glu Lys Phe Leu Asn Ser Val 195 200 205 Ile Ile Ser Cys Glu Ala Ala Ile Thr Tyr Val Asn Arg Tyr Ala Lys 210 215 220 Lys Ala Lys Glu Ile Ala Asp Asn Thr Ser Asp Ala Lys Arg Lys Ala 225 230 235 240 Glu Leu Asn Glu Ile Ala Lys Ile Cys Ser Lys Val Ser Gly Glu Gly 245 250 255 Ala Lys Ser Phe Tyr Glu Ala Cys Gln Leu Phe Trp Phe Ile His Ala 260 265 270 Ile Ile Asn Ile Glu Ser Asn Gly His Ser Ile Ser Pro Ala Arg Phe 275 280 285 Asp Gln Tyr Met Tyr Pro Tyr Tyr Glu Asn Asp Lys Asn Ile Thr Asp 290 295 300 Lys Phe Ala Gln Glu Leu Ile Asp Cys Ile Trp Ile Lys Leu Asn Asp 305 310 315 320 Ile Asn Lys Val Arg Asp Glu Ile Ser Thr Lys His Phe Gly Gly Tyr 325 330 335 Pro Met Tyr Gln Lys Leu Ile Val Gly Gly Gln Asn Ser Glu Gly Lys 340 345 350 Asp Ala Thr Asn Lys Val Ser Tyr Met Ala Leu Glu Ala Ala Val His 355 360 365 Val Lys Leu Pro Gln Pro Ser Leu Ser Val Arg Ile Trp Asn Lys Thr 370 375 380 Pro Asp Glu Phe Leu Leu Arg Ala Ala Glu Leu Thr Arg Glu Gly Leu 385 390 395 400 Gly Leu Pro Ala Tyr Tyr Asn Asp Glu Val Ile Ile Pro Ala Leu Val 405 410 415 Ser Arg Gly Leu Thr Leu Glu Asp Ala Arg Asp Tyr Gly Ile Ile Gly 420 425 430 Cys Val Glu Pro Gln Lys Pro Gly Lys Thr Glu Gly Trp His Asp Ser 435 440 445 Ala Phe Phe Asn Leu Ala Arg Ile Val Glu Leu Thr Ile Asn Ser Gly 450 455 460 Phe Asp Lys Asn Lys Gln Ile Gly Pro Lys Thr Gln Asn Phe Glu Glu 465 470 475 480 Met Lys Ser Phe Asp Glu Phe Met Lys Ala Tyr Lys Ala Gln Met Glu 485 490 495 Tyr Phe Val Lys His Met Cys Cys Ala Asp Asn Cys Ile Asp Ile Ala 500 505 510 His Ala Glu Arg Ala Pro Leu Pro Phe Leu Ser Ser Met Val Asp Asn 515 520 525 Cys Ile Gly Lys Gly Lys Ser Leu Gln Asp Gly Gly Ala Glu Tyr Asn 530 535 540 Phe Ser Gly Pro Gln Gly Val Gly Val Ala Asn Ile Gly Asp Ser Leu 545 550 555 560 Val Ala Val Lys Lys Ile Val Phe Asp Glu Asn Lys Ile Thr Pro Ser 565 570 575 Glu Leu Lys Lys Thr Leu Asn Asn Asp Phe Lys Asn Ser Glu Glu Ile 580 585 590 Gln Ala Leu Leu Lys Asn Ala Pro Lys Phe Gly Asn Asp Ile Asp Glu 595 600 605 Val Asp Asn Leu Ala Arg Glu Gly Ala Leu Val Tyr Cys Arg Glu Val 610 615 620 Asn Lys Tyr Thr Asn Pro Arg Gly Gly Asn Phe Gin Pro Gly Leu Tyr 625 630 635 640 Pro Ser Ser Ile Asn Val Tyr Phe Gly Ser Leu Thr Gly Ala Thr Pro 645 650 655 Asp Gly Arg Lys Ser Gly Gln Pro Leu Ala Asp Gly Val Ser Pro Ser 660 665 670 Arg Gly Cys Asp Val Ser Gly Pro Thr Ala Ala Cys Asn Ser Val Ser 675 680 685 Lys Leu Asp His Phe Ile Ala Ser Asn Gly Thr Leu Phe Asn Gln Lys 690 695 700 Phe His Pro Ser Ala Leu Lys Gly Asp Asn Gly Leu Met Asn Leu Ser 705 710 715 720 Ser Leu Ile Arg Ser Tyr Phe Asp Gln Lys Gly Phe His Val Gln Phe 725 730 735 Asn Val Ile Asp Lys Lys Ile Leu Leu Ala Ala Gln Lys Asn Pro Glu 740 745 750 Lys Tyr Gln Asp Leu Ile Val Arg Val Ala Gly Tyr Ser Ala Gln Phe 755 760 765 Ile Ser Leu Asp Lys Ser Ile Gln Asn Asp Ile Ile Ala Arg Thr Glu 770 775 780 His Val Met 785 7 304 PRT Clostridium butyricum 7 Met Ser Lys Glu Ile Lys Gly Val Leu Phe Asn Ile Gin Lys Phe Ser 1 5 10 15 Leu His Asp Gly Pro Gly Ile Arg Thr Ile Val Phe Phe Lys Gly Cys 20 25 30 Ser Met Ser Cys Leu Trp Cys Ser Asn Pro Glu Ser Gln Asp Ile Lys 35 40 45 Pro Gln Val Met Phe Asn Lys Asn Leu Cys Thr Lys Cys Gly Arg Cys 50 55 60 Lys Ser Gln Cys Lys Ser Ala Gly Ile Asp Met Asn Ser Glu Tyr Arg 65 70 75 80 Ile Asp Lys Ser Lys Cys Thr Glu Cys Thr Lys Cys Val Asp Asn Cys 85 90 95 Leu Ser Gly Ala Leu Val Ile Glu Gly Arg Asn Tyr Ser Val Glu Asp 100 105 110 Val Ile Lys Glu Leu Lys Lys Asp Ser Val Gln Tyr Arg Arg Ser Asn 115 120 125 Gly Gly Ile Thr Leu Ser Gly Gly Glu Val Leu Leu Gin Pro Asp Phe 130 135 140 Ala Val Glu Leu Leu Lys Glu Cys Lys Ser Tyr Gly Trp His Thr Ala 145 150 155 160 Ile Glu Thr Ala Met Tyr Val Asn Ser Glu Ser Val Lys Lys Val Ile 165 170 175 Pro Tyr Ile Asp Leu Ala Met Ile Asp Ile Lys Ser Met Asn Asp Glu 180 185 190 Ile His Arg Lys Phe Thr Gly Val Ser Asn Glu Ile Ile Leu Gln Asn 195 200 205 Ile Lys Leu Ser Asp Glu Leu Ala Lys Glu Ile Ile Ile Arg Ile Pro 210 215 220 Val Ile Glu Gly Phe Asn Ala Asp Leu Gln Ser Ile Gly Ala Ile Ala 225 230 235 240 Gln Phe Ser Lys Ser Leu Thr Asn Leu Lys Arg Ile Asp Leu Leu Pro 245 250 255 Tyr His Asn Tyr Gly Glu Asn Lys Tyr Gln Ala Ile Gly Arg Glu Tyr 260 265 270 Ser Leu Lys Glu Leu Lys Ser Pro Ser Lys Asp Lys Met Glu Arg Leu 275 280 285 Lys Ala Leu Val Glu Ile Met Gly Ile Pro Cys Thr Ile Gly Ala Glu 290 295 300 8 385 PRT Clostridium butyricum 8 Met Arg Met Tyr Asp Tyr Leu Val Pro Ser Val Asn Phe Met Gly Ala 1 5 10 15 Asn Ser Val Ser Val Val Gly Glu Arg Cys Lys Ile Leu Gly Gly Lys 20 25 30 Lys Ala Leu Ile Val Thr Asp Lys Phe Leu Lys Asp Met Glu Gly Gly 35 40 45 Ala Val Glu Leu Thr Val Lys Tyr Leu Lys Glu Ala Gly Leu Asp Val 50 55 60 Val Tyr Tyr Asp Gly Val Glu Pro Asn Pro Lys Asp Val Asn Val Ile 65 70 75 80 Glu Gly Leu Lys Ile Phe Lys Glu Glu Asn Cys Asp Met Ile Val Thr 85 90 95 Val Gly Gly Gly Ser Ser His Asp Cys Gly Lys Gly Ile Gly Ile Ala 100 105 110 Ala Thr His Glu Gly Asp Leu Tyr Asp Tyr Ala Gly Ile Glu Thr Leu 115 120 125 Val Asn Pro Leu Pro Pro Ile Val Ala Val Asn Thr Thr Ala Gly Thr 130 135 140 Ala Ser Glu Leu Thr Arg His Cys Val Leu Thr Asn Thr Lys Lys Lys 145 150 155 160 Ile Lys Phe Val Ile Val Ser Trp Arg Asn Leu Pro Leu Val Ser Ile 165 170 175 Asn Asp Pro Met Leu Met Val Lys Lys Pro Ala Gly Leu Thr Ala Ala 180 185 190 Thr Gly Met Asp Ala Leu Thr His Ala Ile Glu Ala Tyr Val Ser Lys 195 200 205 Asp Ala Asn Pro Val Thr Asp Ala Ser Ala Ile Gln Ala Ile Lys Leu 210 215 220 Ile Ser Gln Asn Leu Arg Gln Ala Val Ala Leu Gly Glu Asn Leu Glu 225 230 235 240 Ala Arg Glu Asn Met Ala Tyr Ala Ser Leu Leu Ala Gly Met Ala Phe 245 250 255 Asn Asn Ala Asn Leu Gly Tyr Val His Ala Met Ala Hi.s Gln Leu Gly 260 265 270 Gly Leu Tyr Asp Met Ala His Gly Val Ala Asn Ala Met Leu Leu Pro 275 280 285 His Val Glu Arg Tyr Asn Met Leu Ser Asn Pro Lys Lys Phe Ala Asp 290 295 300 Ile Ala Glu Phe Met Gly Glu Asn Ile Ser Gly Leu Ser Val Met Glu 305 310 315 320 Ala Ala Glu Lys Ala Ile Asn Ala Met Phe Arg Leu Ser Glu Asp Val 325 330 335 Gly Ile Pro Lys Ser Leu Lys Glu Met Gly Val Lys Gln Glu Asp Phe 340 345 350 Glu His Met Ala Glu Leu Ala Leu Leu Asp Gly Asn Ala Phe Ser Asn 355 360 365 Pro Arg Lys Gly Asn Ala Lys Asp Ile Ile Asn Ile Phe Lys Ala A 375 380 370 Tyr 385 9 35 ADN Séquence artificielle Description de la séquence artificielle : Amorce 9 cgcggatccg tgattggagg agtaaaaatg ataag 35 10 40 ADN Séquence artificielle Description de la séquence artificielle:Amorce 10 tcccccgggg gaatccttta aatagtatta attaataagc 40 REVENDICATIONS 1. Procédé de préparation du 1,3-propanediol à partir d'une substance carbonée, ledit procédé comportant au moins une étape de culture d'un micro-organisme recombinant dans lequel a été introduit au moins un acide nucléique codant pour les deux sous-unités d'une glycérol déshydratase dont l'activité catalytique est indépendante de la présence de co-enzyme B12 ou de l'un de ses précurseurs. 2. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que la glycérol déshydratase dont l'activité catalytique est indépendante de la présence de co-enzyme B12 ou de l'un de ses précurseurs est originaire de Clostridium butyricum. 3. Procédé selon l'une des revendications 1 ou 2, caractérisé en ce que la glycérol déshydratase dont l'activité catalytique est indépendante de la présence de co-enzyme B12 ou de l'un de ses précurseurs est une protéine dimérique composé d'un premier polypeptide ayant au moins 50% d'identité en amino acides avec le polypeptide de séquence SEQ ID N 6 et d'un second polypeptide ayant au moins 50% d'identité en amino acides avec le polypeptide de séquence SEQ ID NO 7. 4. Procédé selon l'une des revendications 1 à 3, caractérisé en ce que le micro-organisme recombinant comprend en outre un acide nucléique codant une 1,3-propanediol déshydrogénase, et de manière préférée une 1,3-propanediol déhydrogénase de Clostridium butyricum VPI 1718. 5. Procédé selon la revendication 4, caractérisé en ce que la 1,3propanediol déhydrogénase est un polypeptide ayant au moins 80% d'identité en amino acides avec le polypeptide de séquence SEQ ID NO 8. 6. Procédé selon l'une des revendications 1 à 5, caractérisé en ce que l'étape de culture du micro-organisme recombinant est effectuée en l'absence de co-enzyme B12 ou de l'un de ses précurseurs. 7. Procédé selon l'une des revendications 1 à 6, caractérisé en ce que la substance carbonée est choisie parmi les osides et les polyols. 8. Procédé selon la revendication 7, caractérisé en ce que l'oside est le glucose et le polyol est le glycérol. 9. Procédé selon l'une des revendications 1 à 8, caractérisé en ce que le micro-organisme est choisi parmi les micro-organismes ne produisant pas naturellement le co-enzyme B12 ou l'un de ses précurseurs. 10. Procédé selon la revendication 9, caractérisé en ce qu'il s'agit d'une bactérie, d'une levure ou d'un champignon. 11. Procédé selon la revendication 10, caractérisée en ce qu'il s'agit d'une bactérie appartenant au genre Clostridium, Escherichia, Bacillus, Lactobacillus ou Lactococcus. 12. Procédé selon la revendication 10, caractérisé en ce qu'il s'agit de la levure Saccharomyces cerevisiae. 13. Procédé selon l'une des revendications 1 à 12, caractérisé en ce que le micro-organisme recombinant comprend également des acides nucléiques codant respectivement une glycérol-3-phosphate déhydrogénase et une glycérol-3-phosphatase. 14. Acide nucléique comprenant tout ou partie d'un polynucléotide codant pour au moins une sous-unité d'une glycérol déshydratase dont l'activité catalytique est indépendante de la présence de co-enzyme B12 ou de l'un de ses précurseurs. 15. Acide nucléique selon la revendication 14, caractérisé en ce qu'il comprend tout ou partie d'un polynucléotide ayant au moins 50% d'identité en nucléotides avec le polynucléotide de séquence SEQ ID NO 1, ou SEQ ID N 2 ou un polynucléotide de séquence complémentaire. 16. Acide nucléique selon la revendication 15, caractérisé en ce qu'il comprend un premier polynucléotide ayant au moins 50% d'identité en nucléotides avec le polynucléotide de séquence SEQ ID N 1 et un second polynucléotide ayant au moins 50% d'identité en nucléotides avec le polynucléotide de séquence SEQ ID N 2. 17. Acide nucléique selon la revendication 16, caractérisé en ce qu'il comprend en outre une séquence à fonction de promoteur de la transcription, fonctionnelle dans la cellule hôte dans laquelle l'expression du polynucléotide est recherchée. 18. Acide nucléique selon la revendication 17, caractérisé en ce que la séquence promotrice est la séquence SEQ ID NO 3 ou une séquence ayant au moins 80 % d'identité en nucléotides avec cette dernière. 19. Acide nucléique à fonction de promoteur bactérien comprenant un polynucléotide ayant au moins 80% d'identité en nucléotides avec la séquence SEQ ID NO 3, ou un polynucléotide de séquence complémentaire. 20. Acide nucléique comprenant tout ou partie d'un polynucléotide codant une 1,3-propanediol déshydrogénase ayant au moins 80% d'identité en nucléotides avec le polynucléotide de séquence SEQ ID NO 4, ou un polynucléotide de séquence complémentaire. 21. Acide nucléique comprenant, de l'extrémité 5' vers l'extrémité 3', un premier acide nucléique selon la revendication 16 et un second acide nucléique selon la revendication 20. 22. Acide nucléique selon la revendication 21, caractérisé en ce qu'il s'agit d'un polynucléotide ayant au moins 50% d'identité en nucléotides avec la séquence nucléotidique SEQ ID NO 5. 23. Acide nucléique selon la revendication 21, caractérisé en ce qu'il comprend en outre un troisième acide nucléique codant une glycérol-3phosphate déshydrogénase et un quatrième acide nucléique codant une glycérol-3-phosphatase. 24. Vecteur de clonage et/ou d'expression recombinant comprenant un acide nucléique selon l'une des revendications 16 à 23. 25. Vecteur recombinant selon la revendication 24, caractérisé en ce qu'il s'agit du plasmide pSPD5 contenu dans la souche de Escherichia coli déposée à la Collection Nationale de Cultures de Micro-organismes (CNCM) le 24 Juin1999 sous le N d'accès I-2243. 26. Cellule hôte recombinante comprenant un acide nucléique selon l'une des revendications 16 à 23 ou un vecteur recombinant selon l'une des revendications 24 à 25. 27. Cellule hôte recombinante selon la revendication 26, caractérisée en ce qu'il s'agit de la souche de Escherichia coli déposée à la Collection Nationale de Cultures de Micro-organismes (CNCM) le 24 Juin 1999 sous le N d'accès I-2243. 28. Polypeptide codé par un acide nucléique selon l'une des revendications 14 à 16, comprenant tout ou partie d'une séquence d'acides aminés ayant au moins 50% d'identité en acides aminés avec la séquence SEQ ID NO 6 ou SEQ ID N 7. 29. Protéine dimérique composée d'un premier polypeptide ayant au moins 50% d'identité en amino-acides avec le polypeptide de séquence SEQ ID N 6 et d'un second polypeptide ayant au moins 50% d'identité en amino-acides avec le polypeptide de séquence SEQ ID N 7. 30. Polypeptide codé par un acide nucléique selon la revendication 20, comprenant tout ou partie d'une séquence d'acides aminés ayant au moins 80% d'identité en acides aminés avec la séquence SEQ ID NO 8. 31. Procédé de production d'un polypeptide selon l'une des revendications 28 à 30, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes: a) préparation d'un vecteur d'expression recombinant selon l'une des revendications 24 et 25; b) introduction du vecteur d'expression recombinant de l'étape a) dans une cellule hôte appropriée; c) culture de la cellule hôte recombinante de l'étape b) dans un milieu de culture approprié; d) récupération du polypeptide recombinant produit dans le surnageant de culture ou dans le lysat cellulaire; e) le cas échéant, purification du polypeptide. 32. Anticorps dirigé contre un polypeptide selon l'une des revendications 28 à 30.