Brevet FR2786398A1 — publié le 20000602

La présente invention concerne l'utilisation de peptides pour la vectorisation d'agents anticancéreux pour des applications dans le traitement et/ou la prévention des cancers et plus particulièrement dans le domaine de la chimiorésistance. Un problème important auquel se heurte la pharmacologie des produits anticancéreux est la résistance intrinsèque ou acquise des cellules cancéreuses à ces produits. En effet, on observe que les cellules cancéreuses de nombreux patients atteints de cancer deviennent ou sont résistantes aux agents anticancéreux, ce qui se traduit par l'apparition de nouvelles évolutions tumorales chez le patient. Les épithéliomes digestifs, les mélanomes, les cancers du rein sont des exemples de chimiorésistance innée. Les leucémies, les cancers du sein, les cancers des bronches à petites cellules chez l'adulte, les neuroblastomes chez l'enfant, répondent généralement bien en début de traitement mais, dans une proportion importante, deviennent progressivement résistants aux traitements. La résistance primaire peut-être liée à des mécanismes d'inhibition du transport transmembranaire, d'inhibition de l'activation des prodrogues, à la modification de l'enzyme cible, de voies métaboliques, à des phénomènes de réparation et d'inactivation. Les phénomènes de résistance acquises sont multiples. L'une de ces résistances est la résistance multidrogue (multidrug résistance ou MDR). La MDR est associée à une diminution de la rétention intracellulaire des médicaments de mode d'action cependant différents (Chen et al., 1986, Cell 47, 381-389 ; Krishan et al., 1997, Cytometry 29, 279-285 ; Riordan et al., 1985, Nature 316, 817-819). Une protéine associée à la membrane, la Pglycoprotéine ou "P-gp", est l'expression phénotypique du gène MDR. Cette protéine agit comme une pompe énergie dépendante transportant des drogues cytotoxiques vers l'extérieur de la cellule avant qu'elles ne produisent leurs effets. L'expression de cette protéine conduit la cellule tumorale à résister à des concentrations élevées d'agents cytotoxiques tels que la doxorubicine, la daunomycine, l'actinomycine D, la vinblastine, la vincristine, la mitomycine C, l'etoposide, la téniposide, etc.... La protéine P-gp est exprimée dans les cellules normales comme dans celles du tractus gastro-intestinal, du foie ou du rein, où l'on pense qu'elle sert à éliminer les toxines ou des médicaments. Elle serait aussi responsable de la faible pénétration dans le cerveau de nombreux médicaments. Une des priorités de la recherche dans le domaine du cancer, est donc de trouver des moyens efficaces pour circonvenir à l'expression et l'efficacité du phénotype de la résistance multidrogue, afin de limiter les échecs des chimiothérapies. Plusieurs études ont été réalisés pour trouver des agents qui inhibent la résistance liée à la P-gp et à restaurer totalement ou partiellement, l'activité antitumorale du produit cytotoxique. De tels agents sont appelés chimiosensibilisateurs ou modulateurs de la P-gp. Ces agents agissent soit directement, en interférant, par compétition ou encombrement stérique, au niveau des sites de fixation des agents cytotoxiques ou indirectement en inhibant la protéine responsable par divers mécanismes. Toute une série de produits sont capables d'inhiber la résistance multi-drogues, tels que des inhibiteurs des canaux calciques, phénothiazines, quinidine, agents antipaludéens, anti-oestrogène, cyclosporine. Cependant la toxicité de ces produits limite pour l'instant leur utilisation clinique. Afin de palier cet inconvénient, il a été proposé dans l'art antérieur des systèmes de transport de certains agents anticancéreux, notamment la doxorubicine, utilisant la transferrine (Barabas K. et al., 1992, The Journal of Biological Chemistry, 267(13) : 9347-9442), le dextran (Ueda Y. et al., 1989, Chem. Pharm. Bull., 37(6) - 1639-41 ; Sheldon K. et al., 1989, Anticancer Research, 9(3) : 637-642), des anticorps (Hurwitz E. et al., 1975, Cancer Research, 35 : 1175-1181), des microspheres (Rogers K. E. et al., 1983, Cancer Research, 43 : 2741-2748 ; Jeanneson P. et al., 1990, Cancer Research, 50,1231-1236), des polymères (Tokoyama M. et al., 1990, Cancer Research, 50 : 1693-1700), ou des fragments de protéines (Ohkawa K. et al., 1993, British Journal of Cancer, 67 : 247-8 ; Asakura T. et al., 1997, Anticancer Drug, 8(2) 199-203). Il a aussi été proposé des moyens de transport des agents anti-cancéreux par séquestration dans des liposomes ou des nanoparticules (Kruh G. D. et Goldstein L. J., 1993, Curr. Opin. Oncol., 5(6) : 1029-34 ; Cuvier C. et al., 1992, Biochemical Pharmacology, 44 : 509-517). Mais ces systèmes ne se sont pas avérés performants du fait notamment de leur toxicité, d'une faible spécificité vis-à-vis des cellules cancéreuses, de la mauvaise stabilité du produit fini au caurs de la conservation, et d'une faisabilité difficile. La présente invention vise donc à offrir un nouveau moyen efficace et non toxique pour lutter contre le problème de résistance multidrogue. Ce but est atteint grâce à l'utilisation de peptides pour la vectorisation d'agents cytotoxiques jusqu'à la cible cancéreuse, lesdits peptides permettant en outre de faire échapper lesdits agents aux différents mécanismes de résistance et particulièrement à la pompe P-gp. Il a été décrit dans l'art antérieur de nombreux peptides capables de traverser les membranes des eucaryotes de manière très rapide et tels que les peptides suivants : Protégrine, Antennapedia, Tachyplésine, Transportan, etc.... Parmi ceux-ci, certains présentent des propriétés cytolytiques. Ces peptides dénommés peptides antibiotiques sont notamment les Protégrines et Tachyplésines. Les Protégrines et Tachyplésine sont des peptides antibiotiques naturels dont la structure est de type épingle à cheveux maintenue par des ponts disulfures. Ces ponts jouent un rôle important dans l'activité cytolytique observée sur cellules humaines. Selon leur structure, les peptides antibiotiques peuvent être classés en trois grandes familles : Les peptides antibiotiques à hélices alpha amphipatiques : cécropines et maganines (Maloy, W. L. et al., 1995, BioPolymer 37,105-122). Les peptides antibiotiques à feuillets bêta réunis par des ponts disulfures : défensines (Lehrer, R. I. et al., 1991, Cell 64:229-230 ; Lehrer, R. I. et al., 1993, Ann. Rev. Immunol. 11 :105-128), protégrines (Kokryakov, V. N. et al., 1993, FEBS 337:231-236), tachyplésines (Nakamura, T. et al., 1988, J. Biol. Chem. 263:16709-16713 ; Miyata, T et al., 1989, J. Biochem. 106:663-668). les peptides antibiotiques à chaînes déstructurées contenant de nombreux coudes liés à la présence de multiples prolines : bacténécines et PR39 (Frank, R. W. et al., 1991, Eur. J. Biochem. 202,849-854). On désigne sous le nom de protégrines un ensemble de cinq peptides désignés PG-1, PG-2, PG-3, PG-4 et PG-5 dont les séquences sont données ci-dessous, étroitement apparentés et isolés de leucocytes de porc (V.N. Kokryakov & col. FEBS lett. 327, 231-236) : PG-1 : RGGRLCYCRRRFCVCVGR-NH2 PG-2 : RGGRLCYCRRRFCICV..-NH2 PG-3 : RGGGLCYCRRRFCVCVGR-NH2 PG-4 : RGGRLCYCRGWICFCVGR-NH2 PG-5 : RGGRLCYCRPRFCVCVGR-NH2 Les tachyplésines (Tamura, H. et al., 1993, Chem. Pharm. Bul. Tokyo 41,978-980), désignées Tl, T2 et T3 et les polyphémusines (Muta, T., 1994, CIBA Found. Sym. 186, 160-174), désignées P1 et P2, dont les séquences sont données ci-dessous, sont des peptides homologues isolés de l'hémolymphe de deux crabes, Tachyplesus tridentatus pour les tachyplésines Tl, T2 et T3 et Limmulus polyphemus pour les polyphémusines P1 et P2 : P1 : RRWCFRVCYRGFCYRKCR-NH2 P2 : RRWCFRVCYKGFCYRKCR-NH2 Protégrines, tachyplésines et polyphémusines contiennent une forte proportion de résidus basiques (lysines et arginines) et possèdent quatre cystéines qui forment deux ponts disulfures parallèles. Ces trois familles de peptides présentent également des homologies avec certaines défensines et en particulier avec la défensine humaine NP-1 (Kokryakov, V. N. et al., 1993, Febs Let. 327, 231-236). Ainsi, dans le cadre de ces travaux de recherche, la Demanderesse a découvert que la réduction irréversible de ces ponts disulfures permet d'obtenir des peptides linéaires, ayant la capacité de traverser rapidement les membranes des cellules de mammifères par un mécanisme passif ne faisant pas appel à un récepteur membranaire. Ces peptides linéaires sont non-toxiques et sans activité lytique, et en conséquence, ils constituent un nouveau système de vectorisation de substances actives dans les domaines thérapeutique ou diagnostic. Les travaux et résultats concernant ces peptides linéaires et leur utilisation comme vecteurs de substances actives sont décrits dans la demande de brevet français de la Demanderesse déposée le 12 Août 1998 sous le No. 97/10297 dont l'enseignement est incorporé ici par référence. Les peptides issus de la famille Antennapedia sont des dérivés du facteur de transcription de l'homéodomaine Antennapedia de la mouche drosophile et sont par exemple décrits dans les demandes de brevet internationales PCT publiées sous les No. W091/18981 et W097/12912. La séquence de ces peptides présente la particularité d'être hautement conservée dans toutes les homéoprotéines. Ces peptides sont composés de trois hélices alpha et sont capables de se transloquer au travers de la membrane cellulaire. Le plus petit fragment de l'homéodomaine capable de traverser les membranes est un peptide de 16 acides aminés (Prochiantz, 1996, Curr. Opin. In Neurob. 6,629-634 ; Derossi et al., 1994, J. Biol. Chem. 269, 10444-10450). Les travaux de recherche réalisés dans le cadre de la présente invention ont maintenant permis à la demanderesse de montrer que ces peptides linéaires, c'est à dire dépourvus de pont disulfure, peuvent être utilisés comme système de vectorisation très efficace permettant de d'amener une substance anti-cancéreuse jusqu'à une cible et de faire traverser à ladite substance la membrane cellulaire de façon à conduire celle-ci jusque dans un compartiment cellulaire tel que le cytoplasme ou le noyau. En outre, de façon surprenante, la Demanderesse a découvert, qu'en plus de leur capacité de vectorisation, certains des ces peptides peuvent être utilisés pour empêcher l'expression de résistance intrinsèque ou acquise des cellules cancéreuses vis-à-vis de ces agents, ci-après aussi désigné chimiorésistance, notamment de contrer le phénomène de résistance multidrogue (MDR) et de permettre à ces agents d'échapper à la pompe P-gp. L'invention a donc plus particulièrement pour objet une composition pharmaceutique destinée au traitement et/ou à la prévention des cancers comprenant au moins un agent anti-cancéreux, caractérisée en ce que ledit agent anti-cancéreux est associé dans la composition avec au moins peptide linéaire capable de transporter ledit agent dans les cellules cancéreuses et d'empêcher l'apparition d'une chimiorésitance vis-à-vis dudit agent, ledit peptide répondant à l'une des formules (I), (II) ou (III) suivantes: Xl -X2 -X3 -X4 -XS-X6-X7-XS -X9 -X10 -Xll -X12 -X13 -X14 -X1S -X16 ( 1 ) dans laquelle formule (I), les résidus X1 à X16 sont des résidus d'acides aminés dont 6 à 10 d'entre-eux sont des acides aminés hydrophobes et X6 est le tryptophane, BXXBXXXXBBBXXXXXXB (II) BXXXBXXXBXXXXBBXB (III), dans lesquelles formules (II) et (III) : les groupes B, identiques ou différents, représentent un résidus d'acide aminé dont la chaîne latérale porte un groupement basique, et les groupes X, identiques ou différents, représentent un résidus d'acide aminé aliphatique ou aromatique, ou lesdits peptides de formules (I), (II), (III) sous forme rétro, constitués d'acides aminés de configuration D et/ou L, ou un fragment de ceux-ci constitué d'une séquence d'au moins 5 et de préférence d'au moins 7 acides aminés successifs des peptides de formules (I), (II) ou (III), dès lors bien entendu que ce fragment présente les propriétés de vectorisation sans toxicité pour les cellules. Les peptides de formule (I) dérivent de la famille Antennapedia. Dans les peptides de formules (I), les acides aminés hydrophobes sont l'alanine, la valine, la leucine, l'isoleucine, la proline, la phénylalanine, le tryptophane, la tyrosine et la méthionine, et les autres acides aminés sont des acides aminés : - non-hydrophobes qui peuvent être des acides aminés non polaires comme la glycine, ou polaires comme la sérine, la thréonine, la cystéine, l'asparagine, la glutamine, ou - acides (acide aspartique ou glutamique), ou - basiques (lysine, arginine ou histidine), ou - une association d'acides aminés de ces trois catégories. Parmi les peptides de formule (I), on préfère ceux comprenant 6 acides aminés hydrophobes et 10 acides aminés non-hydrophobes. Les peptides linéaires de formule (II) dérivent de la famille Protégrine et les peptides linéaires de formule (III) dérivent de la famille Tachyplésine. Parmi les peptides de formules (II) et (III), on préfère ceux dans lesquels : B est choisi parmi l'arginine, la lysine, l'acide diaminoacétique, l'acide diaminobutyrique, l'acide diaminopropionique, l'ornithine, et - X est choisi parmi la glycine, l'alanine, la valine, la norleucine, l'isoleucine, la leucine, la cystéine, la cystéine , la penicillamine, la méthionine, le serine, la thréonine, l'asparagine, la glutamine, la phényalanine, l'histidine, le tryptophane, la tyrosine, la proline, l'Abu, l'acide amino-1-cyclohexane carboxylique, l'Aib, la 2-aminotétraline carboxylique, la 4bromophényalanine, tert-Leucine, la 4-chlorophénylalanine, la bêta-cyclohexyalanine, la 3,4-dichlorophényalanine, la 4fluorophényalanine, l'homoleucine, la bêta-homoleucine, l'homophényalanine, la 4-méthylphényalanine, la 1naphtyalanine, la 2- naphtyalanine, la 4-nitrophényalanine, la 3-nitrotyrosine, la norvaline, la phénylglycine, la 3pyridyalanine, la [2-thiényl]alanine. Dans les peptides de formules (I), (II) ou (III), B, X et X1 à X16 peuvent être des acides aminés naturels ou non, y compris des acides aminés de configuration D. L'association d'un agent anti-cancéreux et d'un peptide défini ci-dessus dans les compositions de l'invention consiste avantageusement en un couplage qui peut être réalisé par tout moyen de liaison acceptable compte tenu de la nature chimique, de l'encombrement et du nombre d'agent anti-cancéreux et de peptide associés. Il peut s'agir de liaisons covalentes, hydrophobes ou ioniques, clivables ou non-clivables dans les milieux physiologiques ou à l'intérieur de la cellules. Le couplage peut être effectué en n'importe quel site du peptide, dans lequel des groupements fonctionnels tels que-OH, -SH,-COOH, -NH2 sont naturellement présents ou ont été introduits. Ainsi, un agent anti-cancéreux peut être lié au peptide au niveau des extrémités N-terminale ou C-terminale ou bien au niveau des chaînes latérales du peptide. De même, le couplage peut être effectué en n'importe quel site de l'agent actif, où par exemple des groupements fonctionnels tels que-OH, -SH,-COOH, -NH2 sont naturellement présents ou ont été introduits. Ainsi, l'invention se rapporte à l'utilisation de composés répondant à la formule (IV) suivante : A (-)m (B)n (IV) dans laquelle A représente un peptide tel que défini précédemment, - B représente un agent anti-cancéreux, - n est 1 ou plus, et de préférence jusqu'à 10 avantageusement jusqu'à 5, - (-)m représente la liaison, ou linker, entre A et B, où m est 1 ou plus, et de préférence jusqu'à 10 avantageusement jusqu'à 5, pour la préparation d'un médicament destiné au traitement et/ou à la prévention des cancers sans induire de chimiorésistance. Les composés de formule (IV) peuvent être préparés par synthèse chimique ou en utilisant des techniques de biologie moléculaire. On peut utiliser pour les synthèses chimiques des appareils commerciaux permettant d'incorporer des acides aminés non-naturels, tels que les énantiomères D et des résidus ayant des chaînes latérales ayant des hydrophobicités et des encombrements différents de ceux de leurs homologues naturels. Au cours de la synthèse, il est évidemment possible de réaliser un large éventail de modifications, par exemple introduire sur le N-terminal un lipide, par exemple prenyl ou myristyl, de façon à pouvoir ancrer le peptide de l'invention et donc le composé de formule (IV) à une membrane lipidique telle que celle d'un liposome constitué de lipides. Il est également possible de remplacer une ou plusieurs liaisons peptidiques (-CO-NH-) par des structures équivalentes comme -CO-N(CH3)-, -CH2-CH2-, -CO-CH2-, ou bien d'intercaller des groupes comme -CH2-, NH-, -0-. On peut également obtenir les composés de formule (IV) ou partie de ceux-ci de nature protéique à partir d'une séquence d'acide nucléique codant pour celuici. La présente invention a aussi pour objet une molécule d'acide nucléique comprenant ou constituée par une séquence nucléique codant pour un peptide linéaire dérivé de peptide antibiotique. Plus particulièrement l'invention concerne une molécule d'acide nucléique comprenant au moins une séquence codant pour un composé de formule (IV) ou une partie de celui de nature protéique. Ces séquences d'acides nucléiques peuvent être des ADN ou ARN et être associées à des séquences de contrôle et/ou être insérées dans des vecteurs. Le vecteur utilisé est choisi en fonction de l'hôte dans lequel il sera transféré; il peut s'agir de tout vecteur comme un plasmide. Ces acides nucléiques et vecteurs sont utiles pour produire les peptides et les composés de formule (IV) ou partie de ceux-ci de nature protéique dans un hôte cellulaire. La préparation de ces vecteurs ainsi que la production ou l'expression dans un hôte des peptides ou des composés de formule (IV) peuvent être réalisées par les techniques de biologie moléculaire et de génie génétique bien connues de l'homme du métier. Comme indiqué précédemment, les travaux de recherche ont mis en évidence que de manière surprenante, les peptides définis ci-dessus, sont capables non seulement de transporter l'agent anticancéreux jusque dans les cellules cancéreuses, mais aussi d'empêcher l'apparition de chimiorésistance vis-à-vis de cet agent. En conséquence, l'invention a également pour objet un procédé d'inhibition de la capacité éventuelle d'un agent anticancéreux à induire une chimiorésistance chez un sujet ayant reçu ledit agent consistant à associer ledit agent à au moins un peptide de formules (I), (II) ou (III) par tout moyen approprié comme notamment ceux décrits précédemment. L'invention a donc également pour objet l'utilisation d'un composé de formule (IV) tel que défini précédemment pour la préparation d'un médicament anticancéreux capable en outre de prévenir l'apparition d'une chimiorésitance. Selon une forme préférée de mise en #uvre de l'utilisation ci-dessus, ledit peptide est associé dans le médicament avec l'agent anti-cancéreux par une liaison du type de celle décrite précédemment. Tout préférentiellement cette liaison est clivable sélectivement dans le milieu cellulaire. Ledit médicament comprend un véhicule pharmaceutiquement acceptable et compatible avec le mode d'administration adopté. Les agents anti-cancéreux entrant dans le cadre de la présente invention sont tous ceux utilisés ou utilisables en chimiothérapie, comme par exemple de manière non limitative : la doxorubicine, la daunomycine, l'actinomycine D, la vinblastine, la vincristine, la mitomycine C, L'etoposide, le téniposide, le taxol, le taxotère, le méthotrexate, etc.... Bien entendu, l'invention concerne plus particulièrement les agents anti-cancéreux dont ont déjà mis en évidence l'apparition d'une chimiorésistance chez les individus qui y ont été exposés. On entend aussi par agent anti-cancéreux, dans le cadre de la présente invention, des substances actives contre la P-gp ou le gène codant celle-ci, et plus particulièrement des anticorps ou partie d'anticorps, des acides nucléiques et oligonucléotides ou des ribozymes. En effet, la présente invention concerne également l'association d'oligonucléotide antisens avec les peptides précédemment décrits pour bloquer l'expression de la P-gp et donc utile dans le traitement ou la prévention des cancers en s'opposant au phénomène de résistance multidrogue. Les compositions de l'invention contenant des composés de formule (IV) et avantageusement un véhicule pharmaceutiquement acceptable peuvent être administrées par différentes voies comme par exemple de manière non limitative, les voies intraveineuse, intramusculaire, sous cutanée, etc.... D'autres avantages et caractéristiques de l'invention apparaîtront dans les exemples qui suivent concernant la préparation de composés de formule (IV) où l'agent anticancéreux est la doxorubicine et l'effet de la vectorisation de la doxorubicine sur son internalisation. I - CONDITIONS EXPÉRIMENTALES. 1) Synthèse Chimique. Plusieurs peptides ont été synthétisés et leur internalisation a été testée dans plusieurs lignées cellulaires. De façon générale, les propriétés physicochimiques des peptides ont été modifiées, et les résultats obtenus montrent que suivant la modification, certains peptides pénètrent beaucoup mieux que d'autres, comme les peptides des composés No. 1 à 6 du tableau I ci-après. Il a également été observé que certains peptides pénètrent plus rapidement dans un type cellulaire que dans d'autres, ce qui indique un tropisme cellulaire. a) Préparation de Doxorubicine-Succ-Peptides. Comme indiqué dans le schéma de synthèse de la figure 1, le couplage de doxorubicine sur un peptide par l'intermédiaire du maillon succinique est effectué en 3 étapes : Au chlorhydrate de doxorubicine (1 eq), solubilisé dans diméthylformaminde (DMF) en présence de Diisopropyléthylamine (DIEA, 2 eq),.est ajouté l'anhydride succinique (l, leq, dissous dans DMF). Après une incubation de 20 min à température ambiante, l'hémisuccinate de doxorubicine ainsi formé est ensuite activé par addition de PyBOP (Benzotriazol-1-yloxopyrrolidinephosphonium Hexafluorophosphate l,leq dans DMF) et DIEA (2 eq). Ce second mélange réactionnel est incubé 20min. Le peptide (1. 2 eq dans DMF) est ensuite ajouté au mélange réactionnel, et se couple spontanément sur l'hémisuccinate de doxorubicine activé au cours d'une incubation supplémentaire de 20min. Le produit de couplage est ensuite purifié sur HPLC (Chromatographie liquide haute pression) préparative, puis lyophilisé. Chacune des étapes, ainsi que le produit final sont contrôlés par HPLC analytique et spectrométrie de masse. b) Préparation de Doxorubicine-SMP-3MP-Peptide. Comme indiqué dans le schéma de synthèse de la figure 2, le couplage De la doxorubicine sur un peptide porteur de fonction thiol est effectué en 2 étapes : Au chlorhydrate de doxorubicine (1 eq), solubilisé dans diméthylformaminde (DMF) en présence de Diisopropyléthylamine (DIEA, 2 eq), est ajouté le N-hydroxySuccinimidyl-Maleimido-Propionate (SMP, 1 eq dans dissous dans DMF). Le peptide porteur d'une fonction thiol (1. 2 eq dans DMF) est ensuite ajouté au mélange réactionnel, et se couple spontanément sur le maléimidopropionate de doxorubicine au cours d'une incubation supplémentaire de 20 min. Le produit de couplage est ensuite purifié sur HPLC (Chromatographie liquide haute pression) préparative, puis lyophilisé. Chacune des étapes, ainsi que le produit final sont contrôlés par HPLC analytique et spectrométrie de masse. 2) Les produits testés. Les produits testés sont rapportés dans le tableau I ci-dessous. Tableau I Composé~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~~ doxo-CO-(CH2)2-CO- RGGRLSYSRRRFSTSTGR doxo-CO-(CH2)2-CO- RGGRLSYSRRRFSVSVGR 3 doxo-CO-(CH2)2-CO- KWSFRVSYRGISYRRSR 4 doxo-CO-(CH2)2-CO- RRLSYSRRRF 5 doxo-SMP-3MP-rqikiwfqnrrmkwkk 6 doxo-SMP-CENIKIWLSLRSYLKRR ~~~~~ doxo = doxorubicine CO- (CH2)2-CO = Linker succinate SMP-3MP = Linker SuccinimydylMaleimidoPropionate-3-MercaptoPropionate. 3) Culture Cellulaire. Les cellules de leucémie myéloïde chronique K562 sensibles et les cellules résistantes K562/ADR ainsi que les cellules HL60/R10 de leucémie promyéloïde sont d'origine humaine et ont été obtenues commercialement auprès de l'ATCC. Les cellules sont ensemencées à environ 104 cellules par puits, 24 h avant l'addition des produits. Les cellules sont maintenues en culture à 37 C dans une atmosphère à 95% d'humidité et 5% de C02 dans un milieu OptiMem. 4) Internalisation. Les cellules K562 sensibles et les cellules résistantes K562/ADR sont incubées soit avec la doxorubicine libre soit avec la doxorubicine vectorisée à une concentration de 3 uM . Après 30 minutes d'incubation à 37 C, les cellules sont lavées trois fois au PBS. L'internalisation des produits est ensuite analysée par cytométrie en flux. Les échantillons sont analysés par un cytomètre de flux équipé d'un laser argon de 15 mA. La fluorescence émise est enregistrée sur une échelle logarithmique à (575 NM) nm après une excitation à (488) nm. La fluorescence est mesurée sur 10000 cellules sélectionnées suivant les paramètres de taille (SS) et de granulosité (FS). Les résultats sont exprimés en pourcentage de cellules positives du logarithme de l'intensité de fluorescence. Les résultats sont analysés par le logiciel Cell Quest. 5) Cvtotoxicité. Les cellules K562 sensibles et les cellules résistantes K562/ADR sont incubées soit avec la doxorubicine libre soit avec la doxorubicine vectorisée à des concentrations croissantes. Après 48 heures en culture en présence des produits. A la fin du temps de culture, le MTT (3-(4,5-diméthylthiazole-2-yl)-2,5-diphényltétrazolium bromure) est rajouté dans les puits et les plaques de culture sont ensuite incubées pendant 4 heures dans l'étuve. Le dépôt cristallin de formazan résultant est alors dissout par addition de 200 l de DMF/SDS. La densité optique (DO) est mesurée à 550 nm (référence 630 nm) en utilisant un lecteur de microplaques. La représentation graphique des pourcentages de DO des puits traités en fonction de la concentration de produits permet de déterminer la IC50.Celle-ci correspond à la concentration du produit inhibant 50% de la croissance. Les valeurs de la IC50 permettent de quantifier le facteur de résistance (F. Rés) des lignées résistantes par le rapport suivant : IC50 du cytotoxique de la lignée résistante F.Rés = ------------------------------------------------ IC50 du cytotoxique de la lignée parentale sensible Le facteur de réversion (F. Rev) correspond à l'effet d'un modulateur (le vecteur) sur la sensibilité des cellules aux agents antitumoraux selon le rapport suivant : IC50 du cytotoxique seul F.Rés = -------------------------------- IC50 du cytotoxique vectorisé II - RESULTATS. 1) Internalisation. Les cellules sensibles K562 et résistantes K562/ADR sont incubées soit avec la doxorubicine libre soit avec la doxorubicine vectorisée. Après 30 min d'incubation, l'internalisation des produits est mesurée par cytométrie de flux. La Figure 3 en annexe montre que dans les cellules résistantes K562/ADR, seulement 5,86% des cellules sont positive alors que quand elle est vectorisée (par exemple sous la forme du composé No. 5 du tableau I) 98% des cellules sont positives, ce qui indique une nette amélioration de pénétration. 2) Cytotoxicité. La sensibilité des cellules aux agents antitumoraux a été mesuré par le test MTT dans les conditions expérimentales définies ci dessus pour lesquelles la relation entre la densité optique et le nombre de cellules viables est linéaire. L'activité de la doxorubicine dans les cellules sensibles (K562) et dans les cellules résistantes (K562/ADR) a tout d'abord été observée. Les cellules sont incubées avec des concentrations croissantes de doxorubicine et après 24 heures d'incubation, la survie des cellules est mesurée par le test MTT. Comme le montre la Figure 4, les cellules K562/ADR sont bien résistantes à la doxorubicine. Par exemple, à une concentration de 8 uM, seulement 15% des cellules sensibles survivent alors que les cellules résistantes survivent à 100%. Puis, le cytotoxicité de la doxorubicine vectorisée a été analysée. Le tableau II ci-dessous représente les concentrations en produits entraînant 50% d'inhibition de croissance (IC50) déterminées sur la lignée sensible (K562) et la lignée résistante (K562/ADR). Tableau II Lignées K562 K562/ADR F.Rés F.Rev Doxo libre 0,9 M 25 M 28 Composé 1 15 M 5-10 M 0,7 2,5 Doxo libre 0,15 M 15,5 M 100 Composé 2 3,6 M 3,2 M 0,9 5 Doxo libre 0,45 M 65 M 144 Composé 3 2 M 1, 5 M 0,8 43 Doxo libre ND 55 M Composé 4 2 0 M 20 M 1 2,8 Doxo libre 0,4 M 70 M 175 Composé 5 1,5 M 2 M 1, 3 35 Doxo libre 0,3 M 70 M 233 Composé 6 5 M 5,5 M 1,1 12,8 Ces résultats montrent que les cellules K562/ADR sont bien résistantes à la doxorubicine seule. La vectorisation de la doxorubicine par un peptide-vecteur permet de circonvenir au problème de résistance multidrogue. Par exemple, dans un cas, la IC50 de la doxorubicine libre dans les cellules résistantes est de 70 M alors que quand elle est vectorisée (composé 5) la IC50 n'est que de 2 uM. Ces résultats montrent également que les produits vectorisés ne sont pas excrétés par la pompe P-gp puisque la même IC50 est obtenue dans les cellules sensibles et les cellules résistantes et le Facteur de résistance est presque 1. Pour être sûr que la cytotoxicité observée pour la doxorubicine vectorisée ne provient pas du peptide tout seul, une expérience a été réalisée en comparant l'activité de la doxorubicine vectorisée (composé 2) avec la doxorubicine rajoutée au peptide mais non couplée. La figure 5 en annexe montre que l'IC50 de la doxorubicine vectorisée (composé 2) est de 19 uM alors que celle de la doxorubicine rajoutée au vecteur est d'environ 50 uM, démontrant ainsi la nécessité de vectorisation pour réduire la résistance des cellules. Le même type d'expérience a été réalisée dans une autre lignée cellulaire résistante à la doxorubicine (HL60/R10). Les résultats de cytoxicité dans les cellules HL60 avec le composé No. 2 sont rapportés dans le tableau III ci-dessous. Tableau III HL60/R10 F. Rev Doxo libre 40 m Composé No. 2 25 m @ 1, 6 REVENDICATIONS 1) Composition pharmaceutique destinée au traitement et/ou à la prévention des cancers comprenant au moins un agent anti-cancéreux, caractérisée en ce que ledit agent anti-cancéreux est associé dans la composition avec au moins peptide capable de transporter ledit agent dans les cellules cancéreuses et d'empêcher l'apparition d'une chimiorésitance vis-à-vis dudit agent, ledit peptide répondant à l'une des formules (I), (II) ou (III) suivantes: Xl X2 X3 X4 XS X6 X7 X8 X9 X10 y'll X12 X13 X14 X15 X16 ( 1 ) dans laquelle formule (I), les résidus X1 à X16 sont des résidus d'acides aminés dont 6 à 10 d'entre-eux sont des acides aminés hydrophobes et X6 est le tryptophane, BXXBXXXXBBBXXXXXXB (II) BXXXBXXXBXXXXBBXB (III), dans lesquelles formules (II) et (III) : les groupes B, identiques ou différents, représentent un résidus d'acide aminé dont la chaîne latérale porte un groupement basique, et les groupes X, identiques ou différents, représentent un résidus d'acide aminé aliphatique ou aromatique, ou lesdits peptides de formules (I), (II), (III) sous forme rétro, constitués d'acides aminés de configuration D et/ou L, ou un fragment de ceux-ci constitué d'une séquence d'au moins 5 et de préférence d'au moins 7 acides aminés successifs des peptides de formules (I) , (II) ou (III) . 2) Composition selon la revendication 1, caractérisée en ce que dans le peptide de formule (I), les acides aminés hydrophobes sont l'alanine, la valine, la leucine, l'isoleucine, la proline, la phénylalanine, le tryptophane, la tyrosine et la méthionine, et les autres acides aminés sont des acides aminés : - non-hydrophobes qui peuvent être des acides aminés non polaires comme la glycine, ou polaires comme la sérine, la thréonine, la cystéine, l'asparagine, la glutamine, ou - acides (acide aspartique ou glutamique), ou - basiques (lysine, arginine ou histidine), ou - une association d'acides aminés de ces trois catégories. 3) Composition selon l'une des revendications 1 ou 2, caractérisée en ce que le peptide de formule (I) comprend 6 acides aminés hydrophobes et 10 acides aminés non-hydrophobes. 4) Composition selon la revendication 1, caractérisée en ce que dans les peptides de formule (II) ou (III) : B est choisi parmi l'arginine, la lysine, l'acide diaminoacétique, l'acide diaminobutyrique, l'acide diaminopropionique, l'ornithine, et - X est choisi parmi la glycine, l'alanine, la valine, la norleucine, l'isoleucine, la leucine, la cystéine, la cystéineAcm, , la penicillamine, la méthionine, le serine, la thréonine, l'asparagine, la glutamine, la phényalanine, l'histidine, le tryptophane, la tyrosine, la proline, l'Abu, l'acide amino-1-cyclohexane carboxylique, l'Aib, la 2-aminotétraline carboxylique, la 4bromophényalanine, tert-Leucine, la 4-chlorophénylalanine, la bêta-cyclohexyalanine, la 3,4-dichlorophényalanine, la 4fluorophényalanine, l'homoleucine, la bêta-homoleucine, l'homophényalanine, la 4-méthylphényalanine, la 1naphtyalanine, la 2- naphtyalanine, la 4-nitrophényalanine, la 3-nitrotyrosine, la norvaline, la phénylglycine, la 3pyridyalanine, la [2-thiényl]alanine. 5) Utilisation d'un composé répondant à la formule (IV) suivante : A (-)m (B)n (IV) dans laquelle : - A représente un peptide tel que défini dans l'une quelconque des revendications 1 à 4, - B représente un agent anti-cancéreux, - n est 1 ou plus, et de préférence jusqu'à 10 avantageusement jusqu'à 5, - (-)m représente la liaison, entre A et B, où m est 1 ou plus, et de préférence jusqu'à 10 avantageusement jusqu'à 5, pour la préparation d'un médicament destiné au traitement et/ou à la prévention des cancers et n'induisant pas de chimiorésistance. 6) Utilisation selon la revendication 5, caractérisée en ce que dans la formule (IV) la liaison (-)m entre A et B est une liaison covalente, hydrophobe ou ionique, clivable ou non-clivable dans les milieux physiologiques ou à l'intérieur de la cellules, ou mélange de celles-ci.