Brevet FR2788784A1 — publié le 20000728

La présente invention se rapporte à un fragment nucléique endogène de type rétroviral intégré à l'ADN du génome humain. Les rétrovirus sont des virus à ARN qui se répliquent par un processus dit de transcription inverse, médié par une ADN polymérase ARN dépendante dénommée reverse transcriptase (RT), codée par le gène pol. L'ARN rétroviral comprend également au moins deux gènes additionnels qui sont les gènes gag et env. Le gène gag code pour les protéines du squelette, c'est à dire pour la matrice, la capside et la nucléocapside. Le gène env code pour les protéines d'enveloppe. La transcription est régulée par des régions promotrices situées au niveau des LTR (Long Terminal Repeat) encadrant les extrémités 5' et 3' terminales du génome rétroviral. Au cours de l'évolution les humains ou leurs ancêtres ont intégré dans leur génome du matériel d'origine rétrovirale suite à une infection. En effet, lors de l'infection d'une cellule, la reverse transcriptase fait une copie ADN de l'ARN rétroviral, cette copie d'ADN pouvant alors éventuellement s'intégrer dans le génome humain. Les rétrovirus peuvent infecter les cellules germinales et se transmettre ainsi aux générations futures par transmission Mendélienne verticale. On parle alors de rétrovirus endogènes qui sont présents sous la forme d'ADN proviral intégré dans le génome de toutes les cellules humaines. La plupart des rétrovirus endogènes sont silencieux ou défectifs. Toutefois certains d'entre eux ont pu conserver tout ou partie de leurs propriétés initiales et peuvent être activés dans des conditions particulières. L'expression des rétrovirus endogènes peut aller de la transcription de gènes viraux jusqu'à la production de particules virales. Ces rétrovirus endogènes peuvent être associés directement ou indirectement au développement de certaines pathologies. Des structures rétrovirales endogènes peuvent se retrouver sous une forme complète LTR-gag-pol-env-LTR ou sous des formes tronquées. Ainsi, dans une précédente demande de brevet (PCT/FR98/01442), la Demanderesse a criblé une banque d'ADNc à l'aide d'une sonde Ppol-MSRV (SEQ ID N0:18) et détecté des clones chevauchants qui lui ont permis de reconstruire un ARN génomique putatif de 7582 nucléotides. Cet ARN génomique présente une structure R-U5-gag-pol-envU3-R. Une interrogation blastn sur plusieurs bases de données à l'aide du génome reconstruit a permis de montrer qu'il existe une quantité importante de séquences génomiques (ADN) apparentées dans le génome humain qui sont trouvées sur plusieurs chromosomes. Ainsi, la Demanderesse a mis en évidence l'existence de structures partielles de type rétroviral dans le génome humain et envisagé leur rôle potentiel dans le développement de maladies auto-immunes, dans des insuccès de grossesse ou des états de grossesse pathologiques. A titre d'exemple on peut citer comme maladie auto-immune la sclérose en plaques, la polyarthrite rhumatoïde, le lupus érythémateux disséminé, le diabète insulino-dépendant et/ou les pathologies qui leur sont associées. L'isolement et le séquençage de fragments d'ADNc chevauchants et l'identification de clones génomiques (ADN)correspondant aux clones d'ADN isolés, décrits dans la demande de brevet PCT précitée de la Demanderesse sont incorporés ici à titre de référence. Isolement et séquençage de fragments d'ADNc chevauchants : Les informations concernant l'organisation de la nouvelle famille de rérovirus endogènes dénommée par la Demanderesse HERV-W ont été obtenues en testant une banque d'ADNc placentaire (Clontech cat#HL5014a) avec les sondes Ppol-MSRV (SEQ ID N0:18) et Penv-C15 (SEQ ID N0:19) et en pratiquant ensuite une technique de "gene walking" à l'aide des nouvelles séquences obtenues. Les expériences ont été mises en oeuvre en se référant aux préconisations du fournisseur de la banque. Des amplifications PCR sur ADN ont également été exploitées pour comprendre cette organisation. Les clones suivants ont été sélectionnés et séquences : - Clone cl.6A2 (SEQ ID N0:20) . région 5' non traduite de HERV-W et une partie de gag - Clone cl.6Al (SEQ ID N0:21): gag et une partie de pol - Clone cl.7Al6 (SEQ ID NO:22): Région 3' de pol - Clone cl.Pi22 (SEQ ID N0:23): région 3' de pol et début de env - Clone cl.24.4 (SEQ ID NO:24) ARN épissé comprenant une partie de la région 5' non traduite de HERV-W, la fin de pol et la région 5' de env - Clone cl.C4C5. (SEQ ID NO:25) : fin de env et région 3' non traduite de HERV-W - Clone cl.PH74 (SEQ ID N0:26) ARN sousgénomique : région 5' non traduite de HERV-W, fin de pol, env, et région 3' non traduite de HERV-W - Clone cl. PH7 (SEQ ID NO:27) : ARN multi-épissé région 5' non traduite de HERV-W, fin de env et région 3' non traduite de HERV-W. - Clone cl.Pi5T (SEQ ID NO:28) : gène pol partiel et région U3-R - Clone ci. 44.4 (SEQ ID N0:29) région R-U5, gène gag et gène pol partiel. A l'aide de ces clones, en procédant à des alignements de séquences, un modèle de séquence totale de HERV-W a été élaboré. Les ARN épissés ont été mis en évidence ainsi que les sites potentiels donneurs et accepteurs d'épissage. Par étude de similitude avec des rétrovirus existants, les entités LTR, gag, pol et env ont été définies. L'organisation génétique putative de HERV-W sous forme ARN est la suivante (SEQ ID N0:30): gène 1..7582 Localisation des clones sur la séquence ARN génomique reconstruite cl.6A2 (1321 pb) 1-1325 ; cl.PH74 (535+2229= 2764 pb) 72-606 et 5353- 7582 ; cl.24.4 (491+1457= 1948 pb); 115-606 et 5353- 6810 ; cI. 44.4 (2372 pb) 115-2496 ; cl. PH7 (369+297= 666pb) 237-606 et 7017-7313; cl.6Al (2938 pb) 586-3559.; cl.Pi5T (2785+566= 3351 pb) 2747-5557 et 7017- 7582 ; C1.7A16 (1422 pb) 2908-4337; cl. Pi22 (317+1689 = 2006 pb) 3957-4273 et 4476-6168 ; C1.C4C5 (1116 pb) 6467-7582 5'LTR 1..120 /note="R of 5'LTR (extrémité 5' incertaine" 121..575 /note="U5 of 5'LTR" divers 579..596 /note="PBS primer binding site pour tRNA- W" divers 606 /note="jonction d'épissage (site donneur d'épissage ATCCAAAGTG-GTGAGTAATA et site accepteur d'épissage CTTTTTTCAG-ATGGGAAACG clone RG083M05, GenBank accession AC000064)" divers 5353 /note="site accepteur d'épissage pour l'ORFl (env) divers 5560 /note="site donneur d'épissage" ORF 5581..7194 /note="ORF1 env 538 AA" /produit-="enveloppe" divers 7017 /note="site accepteur d'épissage pour ORF2 et ORF3" ORF 7039..7194 /note="ORF2 52 AA" ORF 7112..7255 /note="ORF3 48AA" divers 7244..7254 /note="PPT polypurine tract" 3'LTR 7256..7582 /note-="U3-R of 3' LTR (jonction U3-R indéterminée) divers 7563..7569 signal de polyadénylation Identification de clones génomiques (ADN) correspondant aux clones d'ADN isolés : Une interrogation "blastn" sur plusieurs bases de données, à l'aide du génome reconstruit, a montré qu'il existe une quantité importante de séquences apparentées dans le génome humain. Environ 400 séquences ont été identifiées dans GenBank et plus de 200 séquences dans la banque EST, la plupart en anti-sens. Les 4 séquences les plus significatives en taille et en similitude sont les séquences des clones génomiques (ADN) suivants : le clone humain RG083M05 (gb AC000064) dont la localisation chromosomique est 7q21-7q22, le clone humain BAC378 (gb U85196, gb AE000660) correspondant au locus alpha delta du récepteur des cellules T, localisé en 14qll-12, le cosmide humain Q11M15 (gb AF045450) correspondant à la région 21q22.3 du chromosome 21, le cosmide U134E6 (embl Z83850) sur le chromosome Xq22. La localisation des régions alignées pour chacun des clones est indiquée et l'appartenance à un chromosome est indiquée entre crochets (figure 6). Le pourcentage de similitude (sans les larges délétions) entre les 4 séquences et l'ARN génomique reconstruit est indiqué, ainsi que la présence de séquences répétées à chaque extrémité du génome et la taille des plus grandes trames de lecture (ORF). Des séquences répétées ont été trouvées aux extrémités de 3 de ces clones. La séquence reconstruite est contenue intégralement à l'intérieur du clone RG083M05 (9,6 Kb) et présente une similitude de 96%. Cependant le clone RG083M05 présente une insertion de 2 Kb située immédiatement en aval de la région 5' non traduite (5' UTR). Cette insertion est également trouvée dans deux autres clones génomiques qui présentent une délétion de 2,3 Kb immédiatement en amont de la région 3' non traduite (3' UTR). Aucun clone ne contenait les trois trames de lecture (ORFs) gag, pol et env fonctionnelles. Le clone RG083M05 montre une ORF de 538 acides aminés (AA) correspondant à une enveloppe entière. Le cosmide Q11M15 contient deux grandes ORFs contigües de 413 AA (trame 0) et 305 AA (trame +1) correspondant à une polyprotéine pol tronquée. On a maintenant trouvé et isolé un fragment nucléique endogène, intégré à l'ADN du génome humain, qui comprend ou consiste en au moins une partie du gène gag d'un rétrovirus endogène associé à une maladie autoimmune, ou à des insuccès de grossesse ou pathologies de la grossesse, cette partie au moins codant, directement ou indirectement, pour un produit d'expression. Bien entendu, l'invention comprend également le complémentaire dudit fragment. Avantageusement, le fragment précédemment défini répond en outre à au moins l'une quelconque des caractéristiques suivantes : il comprend, ou consiste en, ledit gène gag entier ; ladite partie du fragment au moins code pour la matrice et la capside ; il comprend, ou consiste en, SEQ ID NO:1, SEQ ID NO:2, SEQ ID NO:3, ou le complémentaire de l'une quelconque desdites séquences ; il est localisé sur au moins l'un des chromosomes humain 1, 3,6, 7 et 16, de préférence il est localisé au moins sur le chromosome 3 ; le produit d'expression de ladite partie est de l'ARN messager ; le produit d'expression de ladite partie est immunologiquement reconnu par des anticorps présents dans un échantillon biologique d'un patient atteint d'une maladie auto-immune, telle que la sclérose en plaques ; de préférence, le fluide biologique est choisi parmi le sérum, le plasma, le liquide synovial et l'urine. Un autre objet de l'invention est un produit de transcription endogène, à l'état isolé, susceptible d'être obtenu par transcription d'au moins ladite partie du gène gag d'un fragment de l'invention. L'invention concerne aussi un procédé de détection de séquences nucléotidiques endogènes appartenant à un fragment de l'invention comprenant les étapes suivantes : on effectue au préalable une étape d'extraction de l'ADN cellulaire d'un tissu ou fluide biologique, on réalise au moins un cycle d'amplification de l'ADN cellulaire, telle que par PCR, au moyen d'amorces notamment choisies parmi SEQ ID NO:4 à SEQ ID NO: 9 et SEQ ID NO : 12 à SEQ ID NO : 17, on met en contact l'ADN cellulaire présent dans l'échantillon avec une sonde déterminée susceptible de s'hybrider avec un fragment tel que défini précédemment et de former un complexe d'hybridation, ladite sonde comprenant au moins 15 nucléotides, de préférence 17 et avantageusement 19 nucléotides contigus de SEQ ID NO : 3 ou consistant en SEQ ID NO : 3, dans des conditions appropriées permettant l'hybridation, en particulier dans des conditions de forte stringence, et on détecte les complexes d'hybridation formés par tout moyen approprié. Avantageusement, la sonde est marquée par un traceur, tel que par exemple un traceur radioactif ou une enzyme. L'invention concerne aussi un procédé de détection de séquences nucléotidiques endogènes appartenant à un fragment de l'invention comprenant les étapes suivantes : on effectue au préalable une étape d'extraction de l'ADN cellulaire d'un tissu ou fluide biologique, on réalise au moins un cycle d'amplification de l'ADN cellulaire, telle que par PCR, au moyen d'amorces notamment choisies parmi SEQ ID NO:4 à SEQ ID NO: 9 et SEQ ID NO : 12 à SEQ ID NO : 17, on effectue une étape de transcription traduction in vitro du produit amplifié, et on fait réagir le produit issu de l'étape de transcription / traduction avec un sérum ou plasma d'un patient présentant une maladie auto-immune. L'invention concerne encore un procédé pour l'étude et/ou le suivi d'une prolifération cellulaire des cellules T in vitro selon lequel on met en contact les cellules T d'un patient avec soit des produits de transcription traduction (SEQ ID NO : 31), tels qu'obtenus selon le procédé ci-dessus, soit des peptides de synthèse dérivés de ou appartenant à SEQ ID NO : 31. Un autre objet de l'invention est un procédé de marquage moléculaire in situ de chromosomes isolés de patients dans lequel on utilise une sonde marquée, par tout traceur approprié, comprenant tout ou partie de SEQ ID NO : 3. L'invention concerne aussi : Une protéine recombinante obtenue à partir d'une cassette d'expression dans un hôte bactérien caractérisée en ce que sa séquence protéique consiste en SEQ ID NO : 31 ; en particulier l'hôte bactérien est E. coli. Un réactif pour la détection d'une maladie autoimmune ou un suivi de grossesse comprenant au moins un fragment ou une protéine de l'invention ; L'utilisation d'un fragment ou d'une protéine de l'invention pour détecter, dans un échantillon biologique, une susceptibilité à une maladie auto-immune ou un suivi de grossesse ; en particulier, la maladie auto-immune est la sclérose en plaques. Avant d'exposer la présente invention plus en détail, la définition de certains termes employés dans la description et les revendications est donnée. L'expression produit d'expression signifie tout produit dérivé de l'ADN rétroviral intégré dans le génome humain incluant les produits de la transcription (ARN messager) et les produits issus de la traduction de l'ARN messager obtenu. Dans ce dernier cas, et à titre d'exemple, le produit peut être un peptide, une protéine fonctionnelle ou fonctionnalisable, c'est-à-dire susceptible de devenir fonctionnelle. Par partie codant, directement ou indirectement, pour un produit d'expression, on entend une partie qui à elle seule comprend au moins tout ou partie d'un cadre de lecture ouvert duquel on peut déduire une séquence d'acides aminés, et dont la capacité codante peut être induite par des éléments tels que par exemple ceux susceptibles d'avoir une activité promotrice. Cette définition inclut la variabilité qui peut être retrouvée dans la séquence nucléique codante, sous réserve que les conditions ci-dessus soient respectées. Exemple 1 : du gène gag de la famille HERV-W sur les chromosomes humains par la technique de Southern blot Afin de localiser le gène gag de la famille HERV-W, une sonde correspondante à ce gène de MSRV a été hybridée sur une membrane de Nylon (Hybond N+, Amersham) contenant 5 ug d'ADN de 24 hybrides somatique de cellules [humain x rongeurs] (de l'ADN génomique humain isolé : chromosomes autosomes et 2 chromosomes sexuels) et 3 ADN contrôles (humain, souris et hamster) digérés par l'enzyme de restriction EcoRI. La sonde utilisée est la suivante : Pgag-Cl2 identifiée par SEQ ID NO:3 correspondant à la région codante (de 1056 pb) du clone MSRV gag C12. 1. 1- Obtention du clone 2, C12, contenant en 3'une partie homologue au gène pol, correspondant au gène protéase, et une partie homologue au gène gag correspondant à la nucléocapside et une région 5' codante, correspondant au gène gag, plus spécifiquement la matrice et la capside de MSRV-1. Une amplification par PCR a été effectuée sur de l'ARN total extrait à partir de 100 l de plasma d'un patient atteint de SEP. Un témoin eau, traité dans les mêmes conditions, a été utilisé comme contrôle négatif. La synthèse de cDNA a été réalisée avec 300 pmoles d'une amorce aléatoire (Gibco-BRL, France) et la transcriptase inverse Expand RT (Boehringer Mannheim, France) selon les conditions préconisées par la société. Une amplification par PCR (polymerase chain reaction) a été effectuée avec l'enzyme Taq polymerase (Perkin Elmer, France) en utilisant 10 l de cDNA dans les conditions suivantes : 94 C 2 min, 55 C 1 min, 72 C 2 min puis 94 C 1 min, 55 C 1 min, 72 C 2 min pendant 30 cycles et 72 C pendant 7 min et avec un volume réactionnel final de 50 l. Les amorces utilisées pour l'amplification par PCR sont les suivantes : - amorce 5', identifiée par SEQ ID NO:4 5' CGG ACA TCC AAA GTG ATG GGA AAC G 3' ; - amorce 3', identifiée par SEQ ID NO:5 5' GGA CAG GAA AGT AAG ACT GAG AAG GC 3' Une deuxième amplification par PCR dite nichée a été réalisée avec des amorces 3' et 5' situées à l'intérieur de la région déjà amplifiée. Cette deuxième PCR a été effectuée dans les mêmes conditions expérimentales que celles utilisées lors de la première PCR, en utilisant 10 l du produit d'amplification issu de la première PCR. Les amorces utilisées pour l'amplification par PCR nichée sont les suivantes : - amorce 5', identifiée par SEQ ID NO:6 5' CCT AGA ACG TAT TCT GGA GAA TTG GG 3' ; - amorce 3', identifiée par SEQ ID NO:7 5' TGG CTC TCA ATG GTC AAA CAT ACC CG 3' Un produit d'amplification de 1511 pb a été obtenu à partir de l'ARN extrait du plasma de patient SEP. Le fragment correspondant n'a pas été observé pour le témoin eau. Ce produit d'amplification a été cloné de la façon suivante. L'ADN amplifié a été inséré dans un plasmide à l'aide du kit TA Cloning. Les 2 l de solution d'ADN ont été mélangés avec 5 l d'eau distillée stérile, 1 l d'un tampon de ligation 10 fois concentré 10X Ligation Buffer , 2 l de PCR# Vector (25 ng/ml) et 1 l de T4 DNA Ligase . Ce mélange a été incubé une nuit à 14 C. Les étapes suivantes ont été réalisées conformément au instructions du kit TA Cloning (Invitrogen). Le mélange de ligation a été étalé après transformation de la ligation dans des bactéries E. coli. A la fin de la procédure, les colonies blanches de bactéries recombinantes ont été repiquées pour être cultivées et permettre l'extraction des plasmides incorporés selon la procédure dite de minipréparation d'ADN (J. Sambrook, E.F . Fritsch and T. Maniatis, Molecular Cloning, a laboratory manual, Cold Spring Harbour Laboratory Press, 1989). La préparation de plasmide de chaque colonie recombinante a été coupée par l'enzyme de restriction Eco RI et analysée sur gel d'agarose. Les plasmides possédant un insert détecté sous lumière UV après marquage du gel au bromure d'éthidium, ont été sélectionnés pour le séquençage de l'insert, après hybridation avec une amorce complémentaire du promoteur T7 présent sur le plasmide de clonage du TA cloning kit#. La réaction préalable au séquençage a ensuite été effectuée selon la méthode préconisée pour l'utilisation du kit de séquençage Prise Ready Reaction Amplitaq FS, DyeDeoxyTM Terminator (Applied Biosystems, ref. 402119) et le séquençage automatique a été réalisé sur les appareils 373 A et 377 Applied Biosystems, selon les instructions du fabricant. Le clone obtenu, dénommé C12, permet de définir une région de 1511 pb présentant une phase ouverte de lecture dans la région N-terminale de 1056 pb (SEQ ID N0:3) codante pour 359 acides aminés (SEQ ID N0:31) correspondant aux régions matrice et capside du gène gag. La séquence nucléotidique de C12 est identifiée par SEQ ID NO:1. Elle est représentée à la figure 2 avec les trames de lecture potentielles en aminoacides. 1. 2- Obtention de la sonde gag cl2 MSRV La sonde a été obtenue après amplification par PCR, à partir du plasmide PCRTM vector (kit TA Cloning, Invitrogen) contenant l'insert du clone : gagcl2 de MSRV, avec la Taq polymérase (Perkin Elmer, France) dans les conditions suivantes : 94 C 1 min, 55 C 1 min, 72 C 2 min pendant 35 cycles et 72 C pendant 7 min et avec un volume réactionnel final de 100 l. Les amorces utilisées pour l'amplification par PCR sont les suivantes : - amorce 5', identifiée par SEQ ID N0:12 5'-CTA GAA CGT ATT CTG GAG AAT TGG GA-3' - amorce 3', identifiée par SEQ ID N0:13 5'-CCT AAG GCA GAC TTT TGA AG -3' Un produit d'amplification de 1056 pb a été obtenu pour gag cl2 de MSRV. Après l'amplification par PCR, le fragment a été analysé en gel d'agarose 1%. Le fragment détecté sous lumière UV, après marquage du gel, au bromure d'éthidium, a été coupé et marqué au [[alpha]-P32] à l'aide des amorces aléatoires (Gibco-BRL, France) conformément aux instructions du kit Ready to go DNA labelling (Pharmacia Biotech). Les nucléotides non incorporés ont été éliminés avec une colonne G-50 Quick Spin (Boehringer, Mannheim). 1. 3- Southern blot Les conditions d'hybridation sont les suivantes : Après 4 heures de pré-hybridation (en 5x SSC, 1X Denhardt's, 0,1% SDS, 50% formamide, 20 mM Tris-HCl pH = 7,5,0,1 mg/ml d'ADN de sperme de hareng), la membrane de Nylon contenant les chromosomes humains a été hybridée (en 5x SSC, lx Denhardt's, 0,1% SDS, 50% formamide, 20 mM Tris-HCl pH = 7,5, 0,1 mg/ml d'ADN de sperme de hareng, 5% sulfate de dextran) pendant 18 heures à 42 C, avec la sonde d'ADN de 1056 pb (SEQ ID N0:3) de 32 gag cl2 marquée au 2P. Après hybridation, la membrane (The BIOS Monochromosomal Somatic Cell Hybrid blot, de Quantum Bioprobe) hybridée avec la sonde gag a été lavée en solution 2x SSC, 0,2% SDS 2 fois 15 min, à température ambiante, et (en 0,2x SSC - 0,2% SDS) 2 fois 15 min, à 45 C. Après lavage, la membrane a été exposée au film aux rayons X, à -80 C en présence d'écran amplificateur. Les résultats sont présentés dans le tableau 1 ci-après. Exemple 1 : Localisation chromosomique de la région gag HERV-W par Southern blot. n chromo # 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 X Y sou- ham- -ris-ster rodent m h h h h h h h h h h h h h h m m h h m m h h parent ~~~ ~~~ ~~~ ~~~ ~~~ ~~~ ~~~ ~~~ ~~~ ~~~ ~~~ ~~~ ~~~ ~~~ ~~~ ~~~ ~~~ ~~~ ~~~ ~~~ ~~~ ~~~ ~~~ ~~~ ~~~~ ~~~~ tondes 5 0 6 6 5 3 2 3 2 4 3 6 3 1 3 0 3 2 1 0 4 0 4 0 0 0 mouse (m) , hamster (h) : cellules receveuses de l'ADN de chromosomes humains. Le chifre indiqué en-dessous de chaque chromosome correspondond au nombre de bandes rencontrés. Total de copies pour le gène gag = 66 al )#' (D au 1 Exemple 2 : par PCR du gène gag de la famille HERV-W sur chacun des chromosomes humains isolés ; vérification de la spécificité des amplifications par Southern blot ; de transcription- traduction in vitro (PTT) à partir des produits de PCR, afin de vérifier la capacité codante, repérer quels sont les chromosomes humains présentant des trames de lecture ouvertes pour le gène gag de la famille HERV-W. 2. 1- Amplification par PCR Pour l'amplification du gène gag HERV-W, une PCR a été effectuée sur chaque chromosome humain isolé [NIGMS human/rodent somatic cell hybrid panel #2. The human monochromosomal NIGMS somatic hybrid mapping panel #2, décrit par H. L. Drwinga et all et B. L. Dubois et al) obtenu de Coriell Institute (Camden, NJ)] avec l'enzyme Taq polymérase (Perkin Elmer, France) en utilisant: 40 pmol de chaque amorce, 25 mM de chaque dNTP (Pharmacia), 2,5 mM MgCl2, 2,5 U de Taq polymérase dans le tampon PCR standard (Perkin Elmer), et 300 ng DNA de chromosome isolé dans un volume final de 100 l. Les conditions de PCR pour amplifier la région gag sont les suivantes : 3 min à 94 C; puis 1 min à 94 C, 1 min à 55 C, 3 min à 72 C, pendant 30 cycles et 7 min à 72 C. Les amorces utilisées pour l'amplification, par PCR, du gène gag à partir d'un ATG introduit dans la séquence gag HERV-W sur chaque chromosome humain isolé sont les suivantes : - amorce 5', identifiée par SEQ ID N0:14 5'-TTT GGT AAT ACG ACT CAC TAT AGG GCA GCC ACC ATG GGA AAC GTT CCC CCC GAG-3' L'amorce contient la séquence du promoteur T7 RNA polymérase, un spacer , la séquence Kozak (site d'initiation à la traduction chez les eucaryotes) et la séquence 5' gag à partir de l'ATG de HERV-W. - amorce 3', identifiée par SEQ ID N0:15 5'-TTTTTTTTTTTTTTTTTTTCAGGCTGCGCCAGTGTCCAGGAGAC-3' L'amorce contient une queue de poly-A (pour stabiliser la transcription de l'ARN, représentée par 18 bases T), un codon stop (représenté par TCA) et la séquence du gène protéase (G+E+A) de MSRV-1. Pour l'amplification du gène gag HERV-W en utilisant des oligonucléotides définis dans les régions LTR et protéase de HERV-W avec l'enzyme Taq polymérase (Perkin Elmer, France), les conditions de PCR ont été les suivantes : 3 min à 94 C; puis 1 min à 94 C, 1 min à 60 C, 2 min à 72 C, 35 cycles ; suivi de 7 min à 72 C, avec 50 ng de chaque ADN monochromosomal. Les amorces utilisées pour l'amplification, par PCR, du gène gag à l'aide de l'oligonucléotide défini dans la séquence LTR HERV-W sur chaque chromosome humain isolé, sont les suivantes : - amorce 5', identifiée par SEQ ID N0:16 5'-TGTCCGCTGTGCTCCTGATC-3' - amorce 3', identifiée par SEQ ID N0:17 5'-TTTTTTTTTTTTTTTTTTTCAGGCTGCGCCAGTGTCCAGGAGAC-3' L'amorce contient une queue de poly-A (pour stabiliser la transcription de l'ARN, représenté par 18 bases T), un codon stop (représenté par TCA) et la séquence du gène protéase de G+E+A de MSRV-1. Les amplification par PCR ont été effectuées dans l'appareil MJ Research PTC200, Peltier Thermal cycler. Les produits de PCR (10 l de chaque produit PCR) ont été analysés dans un gel 1% agarose en TBE lX(Tris-HCl, borate, EDTA). Afin de vérifier la spécificité des produits d'amplification, 3 l de chaque produit PCR ont été analysés en gel d'agarose et puis transférés sur une membrane de Nylon (Hybond#-N+, Amersham) (Southern blot) à l'aide de NaOH 0,4N. L'hybridation avec la sonde gag cl2 (1056 pb) (J. Sambrook et al, 1989) a été effectuée dans les conditions suivantes : après 4 heures de préhybridation (en 5x SSC, IX Denhardt's, 0,1% SDS, 50% formamide, 20 mM Tris-HCl pH = 7,5,0,1 mg/ml d'ADN de sperme de hareng), la membrane de Nylon a été hybridée (en 5x SSC, lx Denhardt's, 0,1% SDS, 50% formamide, 20 mMTris- HC1 pH = 7,5, 0,1 mg/ml d'ADN de sperme de hareng, 5% sulfate de dextran) pendant 18 heurs à 42 C, avec la sonde 32 d'ADN gag marquée au P. Les produits de PCR gag de chaque chromosome humain isolé ont été lavés en solution de 2x SSC, 0,2% SDS 1 fois, 15 min à température ambiante ; 0,2xSSC, 0,1% SDS 2 fois 15 min chaque lavage à 65 C, en 0,1x SSC, 0,1% SDS 2 fois 15 min chaque à 65 C, et en 0,1x SSC, 0,1% SDS 2 fois 30 min chaque à température ambiante. Une partie du volume restant (4 l) des produits d'amplification par PCR a été utilisée pour le test de transcription-traduction in vitro PTT, (Roest PAM et al, 1993) (Promega, France). Le volume restant a été utilisé pour le clonage dans le vecteur pCR# 2. 1-TOPO (Invitrogen) conformément aux instructions du kit, et pour le séquençage avec la méthode préconisée pour l'utilisation du kit de séquençage PRISMTM Ready Reaction Amplitaq FS, DyeDeoxyTM Terminator (Applied Biosystems, réf. 402119) et le séquençage automatique a été réalisé sur les appareils 373A et 377 Applied Biosystems, selon les instructions du fabricant. La partie codée (SEQ ID N0:31) par le fragment de 2009 pb (SEQ ID N0:2) a été amplifié par PCR avec l'enzyme Pwo (5U/ul)(Boehringer Mannheim, France) en utilisant 1 l de la mini-préparation de l'ADN du clone gag (SEQ ID NO : 3) sous les conditions suivantes : 95 C 1 min, 60 C 1 min, 72 C 2 min pendant 25 cycles et avec un volume réactionnel final de 50 l à l'aide des amorces: - amorce 5'(Bam HI) (SEQ ID NO :8): 5' ATG GGA AAC GTT CCC CCC GAG 3' (21 mers), et - amorce 3' (Hind III), identifiée par SEQ ID NO: 9 5 GGC CTA AGG CAG ACT TTT GAA 3' (21 mers) Le fragment obtenu après PCR, a été linéarisé par Bam HI et Hind III et sous-cloné dans les vecteurs d'expression pET28C et pET21C (NOVAGEN) linéarisé par Bam HI et Hind III. Le séquençage de l'ADN du fragment de 1089 pb dans les deux vecteurs d'expression a été réalisé selon la méthode préconisée pour l'utilisation du kit de séquençage "PRISMTM Ready Reaction Amplitaq@ FS, DyeDeoxyTM Terminator" (Applied Biosystems, ref. 402119) et le séquençage automatique a été réalisé sur les appareils 373 A et 377 Applied Biosystems, selon les instructions du fabricant. L'expression de la séquence nucléotidique du fragment de 1089 pb du clone gag par les vecteurs d'expression pET28C et pET21C sont identifiées par respectivement SEQ ID N0:10 et SEQ ID N0:11. 2. 2- Test de transcription-traduction in vitro (PTT, Promega) Ce test a été effectué pour repérer les chromosomes humains présentant des trames de lecture ouvertes pour le gène gag de la famille HERV-W. Dans un volume réactionnel de 25 l, un mélange contenant 12,5 l de lysat de réticulocyte de lapin TNT# (Promega), 1 l de tampon de réaction TNT (Promega), 0,5 l d'ARN polymérase TNT# (Promega), 0,5 l de mélange à lmM des acides aminés moins méthionine, 2 l de 35 S-méthionine (1. 000 Ci/mmol) à 10 mCi/pl (Amersham), 0,5 l d'inhibiteur de ribonucléase RNasin à 40 U/pl, 4 l de produits d'amplification par PCR (équivalent à 1 pg) de chaque chromosome humain et 4 l d'eau. Ce mélange a été incubé à 30 C pendant 90 min. Les protéines gag correspondant aux produits de transcription/traduction du gène gag de la famille HERV-W de chaque chromosome humain, amplifié par PCR, ont été mises en évidence par électrophorèse sur gel de polyacrylamide à 10% en présence de Dodécyl Sulfate de Sodium (SDS) -PAGE après exposition du gel au film aux rayons X à température ambiante en présence d'écran amplificateur. Les résultats sont présentés dans le tableau 2 ci-après. Exemple 2 : Recherche de la capacité codante de gène gag par PCR puis PTT "transcription et traduction in vitro" (protein trunkation test). n''chromo n"chromo 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 I 15 16 17 18 19 20 21 22 X Y I eau m h h h h h h h h h h h h h m m h h m m h h rodent rodent parent parent ~~~ ~~~ ~~~ ~~~~~~ ~~~ ~~~ ~~~ ~~~ ~~~ ~~~ ~~~ ~~~ ~~~ ~~~ ~~~ ~~~ ~~~ ~~~ ~~~ ~~~ ~~~ ~~~ ~~~ ~~~~ 28 45- 23 22 - - - - 14 PCR gag gag 23 25 18 18 20 17 17 Le chifre indiqué en-dessous de chaque chromosome correspond à la masse moléculaire (kDa) des protéines visualisés en gel de polyacrylamide en présence de SDS. 21 Tableau 2 Exemple 3 : expression du clone gag chez Escherichia coli, et réaction avec des sérums humains On a exprimé la partie codante SEQ ID NO: 2 chez Escherichia coli puis on a testé les produits ainsi exprimés vis à vis de sérum de patients atteints de SEP, ainsi que de sérum de patients sains. Les constructions pET28c-clone gag (1089 pb) et pET21C-clone gag (1089 pb) synthétisent, dans la souche bactérienne BL21 (DE3), une protéine en fusion N- et Cterminale pour le vecteur pET28C et C-Terminale pour le vecteur pET21C avec 6 résidus histidine, de masse moléculaire apparente d'environ 45 kDa, mise en évidence par électrophorèse sur gel de polyacrylamide SDS-PAGE (U. K. Laemmli, Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4, Nature, 1970, 227 :680-685). La réactivité de la protéine a été mise en évidence vis à vis d'un anticorps monoclonal antiHistidine (DIANOVA) par la technique de Western blot (H. Towbin et al., Electrophoretic transfer of proteins from polyacrylamid gels to nitrocellulose sheets : procedure and some applications, Proc. Natl. Acad. Sci. USA., 1979, 76 :4350-4354). Les protéines recombinantes pET28c-clone gag (1089 pb) et pET21C-clone gag (1089 pb) ont été visualisées en SDS-PAGE dans la fraction insoluble après digestion enzymatique des extraits bactériens avec 50 l de lysozyme (10 mg/ml) et lyse par ultrasons. Les propriétés antigéniques des antigènes recombinants pET28C-clone gag (1089 pb) et pET21C-clone gag (1089 pb) ont été testées par Western Blot après solubilisation du culot bactérien avec 2% SDS et 50 mM P-mercaptoéthanol. Après incubation avec les sérums de patients atteints de sclérose en plaques, les sérums des témoins neurologiques et les sérums de témoins de centre de transfusion sanguine (CTS), les immunocomplexes ont été détectés à l'aide d'un sérum de chèvre anti-IgG et antiIgM humaines, couplé à la phosphatase alcaline. Les résultats sont présentés dans le tableau 3 ci-après. Tableau 3 Réactivité de sérums de patients atteints de sclérose en plaques et témoins avec la protéine recombinante de gag produite chez E. colia MALADIE NOMBRE NOMBRE D'INDIVIDUS TESTÉS D'INDIVIDUS POSITIFS SEP 15 6 2(+++), 2 (++) , 2(+) TEMOINS NEUROLOGIQUES 2 1(+++) TEMOINS SAINS (CTS) 22 1(+/-) (a) Les bandelettes contenant 1,5 ug d'antigène recombinant gag présentent une réactivité contre de sérums dilués au 1/100. L'interprétation de Western Blot est basée sur la présence ou absence d'une bande gag spécifique sur les bandelettes. Des contrôles positifs et négatifs sont inclus dans chaque expérience. Ces résultats montrent que, dans les conditions techniques utilisées, environ 40% des sérums humains atteints de sclérose en plaques testés réagissent avec la protéine recombinante gag. LISTE DE SÉQUENCES (1) INFORMATIONS GENERALES: (i) DEPOSANT: (A) NOM : (B) RUE : (C) VILLE : L'ETOILE (E) PAYS : (F) CODE POSTAL : (ii) TITRE DE L'INVENTION : nucléotidique endogène associé à une maladie auto-immune, procédé de marquage et réactif. (iii) NOMBRE DE SÉQUENCES : (iv) FORME DECHIFFRABLE PAR ORDINATEUR: (A) TYPE DE SUPPORT: Floppy disk (B) ORDINATEUR : PC compatible (C) SYSTEME D'EXPLOITATION : (D) LOGICIEL: PatentIn Release #1.0, Version #1.30 (OEB) (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO:1: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SÉQUENCE: (A) LONGUEUR : paires de bases (B) TYPE : (C) NOMBRE DE BRINS : (D) CONFIGURATION : (ii) TYPE DE MOLECULE : (xi) DESCRIPTION DE LA SÉQUENCE : ID NO:1: CCTAGAACGT ATTCTGGAGA ATTGGGACCA ATGTGACACT CAGACGCTAA GAAAGAAACG 60 ATTTATATTC TTCTGCAGTA CCGCCTGGCC ACAATATCCT CTTCAAGGGA GAGAAACCTG 120 GCTTCCTGAG GGAAGTATAA ATTATAACAT CATCTTACAG CTAGACCTCT TCTGTAGAAA 180 GGAGGGCAAA TGGAGTGAAG TGCCATATGT GCAAACTTTC TTTTCATTAA GAGACAACTC 240 ACAATTATGT AAAAAGTGTG GTTTATGCCC TACAGGAAGC CCTCAGAGTC CACCTCCCTA 300 CCCCAGCGTC CCCTCCCCGA CTCCTTCCTC AACTAATAAG GACCCCCCTT TAACCCAAAC 360 GGTCCAAAAG GAGATAGACA AAGGGGTAAA CAATGAACCA AAGAGTGCCA ATATTCCCCG 420 ATTATGCCCC CTCCAAGCAG TGAGAGGAGG AGAATTCGGC CCAGCCAGAG TGCCTGTACC 480 TTTTTCTCTC TCAGACTTAA AGCAAATTAA AATAGACCTA GGTAAATTCT CAGATAACCC 540 TGACGGCTAT ATTGATGTTT TACAAGGGTT AGGACAATCC TTTGATCTGA CATGGAGAGA 600 TATAATGTTA CTACTAAATC AGACACTAAC CCCAAATGAG AGAAGTGCCG CTGTAACTGC 660 AGCCCGAGAG TTTGGCGATC TTTGGTATCT CAGTCAGGCC AACAATAGGA TGACAACAGA 720 GGAAAGAACA ACTCCCACAG GCCAGCAGGC AGTTCCCAGT GTAGACCCTC ATTGGGACAC 780 AGAATCAGAA CATGGAGATT GGTGCCACAA ACATTTGCTA ACTTGCGTGC TAGAAGGACT 840 GAGGAAAACT AGGAAGAAGC CTATGAATTA CTCAATGATG TCCACTATAA CACAGGGAAA 900 GGAAGAAAAT CTTACTGCTT TTCTGGACAG ACTAAGGGAG GCATTGAGGA AGCATACCTC 960 CCTGTCACCT GACTCTATTG AAGGCCAACT AATCTTAAAG GATAAGTTTA TCACTCAGTC 1020 AGCTGCAGAC ATTAGAAAAA ACTTCAAAAG TCTGCCTTAG GCCCGGAGCA GAACTTAGAA 1080 ACCCTATTTA ACTTGGCATC CTCAGTTTTT TATAATAGAG ATCAGGAGGA GCAGGCGAAA 1140 CGGGACAAAC GGGATAAAAA AAAAAGGGGG GGTCCACTAC TTTAGTCATG GCCCTCAGGC 1200 AAGCAGACTT TGGAGGCTCT GCAAAAGGGA AAAGCTGGGC AAATCAAATG CCTAATAGGG 1260 CTGGCTTCCA GTGCGGTCTA CAAGGACACT TTAAAAAAGA TTATCCAAGT AGAAATAAGC 1320 CGCCCCCTTG TCCATGCCCC TTACGTCAAG GGAATCACTG GAAGGCCCAC TGCCCCAGGG 1380 GATGAAGATA CTCTGAGTCA GAAGCCATTA ACCAGATGAT CCAGCAGCAG GACTGAGGGT 1440 GCCCGGGGCG AGCGCCAGCC CATGCCATCA CCCTCACAGA GCCCCGGGTA TGTTTGACCA 1500 TTGAGAGCCA A 1511 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO:2: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SÉQUENCE: (A) LONGUEUR : paires de bases (B) TYPE : nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS : (D) CONFIGURATION : (ii) TYPE DE MOLECULE : (xi) DESCRIPTION DE LA SÉQUENCE : ID NO:2: ATACGACTAC TATAGGGCGA ATTGGGCCCT CTAGATGCAT GCTCGAGCGG CCGCCAGTGT 60 GATGGATATC TGCAGAATTC GCCCTTTGTC CGCTGTGCTC CTGATCCAGC GAGGCGCCCA 120 TTGCTGCTCC CAATTGGGCT AAAGGCTTGC CATTGTTCCC ACACGGCTAA GTGCCCGGGT 180 TCATCCTAAT TGAGCTGAAC ACTAGTCACT GGGTTCCATG GTTCTCTTCC ATGACCCACG 240 GCTTCTAATA GAGCTCTAAT ACTCACCACA TGGCCCAAGA TTCCATTCCT TGGAATCCGT 300 GAGGCCAAGA ACCCCAGGTC AGAGAACACG AGGCTTGCCA CCGTCTTGGA AGTGGCCCGC 360 CGCCATCTTG GGAGCTCTGG GAGCAAGGAC CCCCCAGTAA CATTTTGGCA ACCACAAAGG 420 GACCTCCAAA GCGATGGGAA ACATTCCCCC CAAGGCAAAA ACGCCCCTAA GATGTATTCT 480 GGAGAATTGG GACCAATGTG ACACTCAGAC GCTAAGAAAG AAACGATTTA TATTCTTCTG 540 CAGTACCGCC TGGCCACAAT ATCCTCTTCA AGGGAGAGAA ACCTGGCTTC CTGAGGGAAG 600 TATAAATTAT AACATCATCT TACAGCTAGA CCTCTTCTGT AGAAAGGAGG GCAAATGGAG 660 TGAAGTGCCA TATGTGCAAA CTTTCTTTTC ATTAAGAGAC AACTCACAAT TATGTAAAAA 720 GTGTGGTTTA TGCCCTACAG GAAGCCCTCA GAGTCCACCT CCCTACCCCA GCGTCCCCCC 780 CCCGACTCCT TCCTCAACTA ATAAGGACCC CCCTTTAACC CAAACGGTCC AAAAGGAGAT 840 AGACAAAGGG GTAAACAATG AACCAAAGAG TGCCAATATT CCCCGATTAT GCCCCCTCCA 900 AGCAGTGAGA GGAGGAGAAT TCGGCCCAGC CAGAGTGCCT GTACCTTTTT CTCTCTCAGA 960 CTTAAAGCAA ATTAAAATAG ACCTAGGTAA ATTCTCAGAT AACCCTGACG GCTATATTGA 1020 TGTTTTACAA GGGTTAGGAC AATCCTTTGA TCTGACATGG AGAGATATAA TGTTACTACT 1080 AAATCAGACA CTAACCCCAA ATGAGAGAAG TGCCGCTGTA ACTGCAGCCC GAGAGTTTGG 1140 CGATCTTTGG TATCTCAGTC AGGTCAACAA TAGGATGACA ACAGAGGAAA GAACAACTCC 1200 CACAGGCCAG CAGGCAGTTC CCAGTGTAGA CCCTCATTGG GACACAGAAT CAGAACATGG 1260 AGATTGGTGC CACAAACATT TGCTAACTTG CGTGCTAGAA GGACTGAGGA AAACTAGGAA 1320 GAAGCCTATG AATTACTCAA TGATGTCCAC TATAACACAG GGAAAGGAAG AAAATCCTAC 1380 TGCTTTTCTG GACAGACTAA GGGAGGCATT GAGGAAGCAT ACCTCCCTGT CACCTGACTC 1440 TATTGAAGGC CAACTAATCT TAAAGGATAA GTTTATCACT CAGTCAGCTG CAGACATTAG 1500 AAAAAACTTC AAAAGTCTGC CTTAGGCCCG GAGCAGAACT TAGAAACCCT ATTTAACTTG 1560 GCATCCTCAG TTTTTTATAA TAGAGATCAG GAGGAGCAGG CGAAACGGGA CAAACGGGAT 1620 AAAAAAAAAA GGGGGGGTCC ACTACTTTAG TCATGGCCCT CAGGCAAGCA GACTTTGGAG 1680 GCTCTGGAAA AGGGAAAAGC TGGGCAAATC AAATGCCTAA TAGGGCTGGC TTCCAGTGCG 1740 GTCTACAAGG ACACTTTAAA AAAGATTATC CAAGTAGAAA TAAGCCGCCC CCTTGTCCAT 1800 GCCCCTTACG TCAAGGGAAT CACTGGAAGG CCCACTGCCC CAGGGGATGA AGATACTCTG 1860 AGTCAGAAGC CATTAACCAG ATGATCCAGC AGCAGGACTG AGGGTGCCCG GGGCGAGCGC 1920 CAGCCCATGC CATCACCCTN ACAGAGCCCC GGGTATGCTT GACCATTGAG AGCCAGGAGG 1980 TTAACTGTCT CCTGGACACT GGCGCAGCC 2009 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO:3: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SÉQUENCE: (A) LONGUEUR : paires de bases (B) TYPE : (C) NOMBRE DE BRINS : (D) CONFIGURATION : (ii) TYPE DE MOLECULE : (xi) DESCRIPTION DE LA SÉQUENCE : ID NO:3: CTAGAACGT ATTCTGGAGA ATTGGGACCA ATGTGACACT CAGACGCTAA GAAAGAAACG ATTTATATTC TTCTGCAGTA CCGCCTGGCC ACAATATCCT CTTCAAGGGA GAGAAACCTG GCTTCCTGAG GGAAGTATAA ATTATAACAT CATCTTACAG CTAGACCTCT TCTGTAGAAA GGAGGGCAAA TGGAGTGAAG TGCCATATGT GCAAACTTTC TTTTCATTAA GAGACAACTC ACAATTATGT AAAAAGTGTG GTTTATGCCC TACAGGAAGC CCTCAGAGTC CACCTCCCTA CCCCAGCGTC CCCTCCCCGA CTCCTTCCTC AACTAATAAG GACCCCCCTT TAACCCAAAC GGTCCAAAAG GAGATAGACA AAGGGGTAAA CAATGAACCA AAGAGTGCCA ATATTCCCCG ATTATGCCCC CTCCAAGCAG TGAGAGGAGG AGAATTCGGC CCAGCCAGAG TGCCTGTACC TTTTTCTCTC TCAGACTTAA AGCAAATTAA AATAGACCTA GGTAAATTCT CAGATAACCC TGACGGCTAT ATTGATGTTT TACAAGGGTT AGGACAATCC TTTGATCTGA CATGGAGAGA TATAATGTTA CTACTAAATC AGACACTAAC CCCAAATGAG AGAAGTGCCG CTGTAACTGC AGCCCGAGAG TTTGGCGATC TTTGGTATCT CAGTCAGGCC AACAATAGGA TGACAACAGA GGAAAGAACA ACTCCCACAG GCCAGCAGGC AGTTCCCAGT GTAGACCCTC ATTGGGACAC AGAATCAGAA CATGGAGATT GGTGCCACAA ACATTTGCTA ACTTGCGTGC TAGAAGGACT GAGGAAAACT AGGAAGAAGC CTATGAATTA CTCAATGATG TCCACTATAA CACAGGGAAA GGAAGAAAAT CTTACTGCTT TTCTGGACAG ACTAAGGGAG GCATTGAGGA AGCATACCTC CCTGTCACCT GACTCTATTG AAGGCCAACT AATCTTAAAG GATAAGTTTA TCACTCAGTC AGCTGCAGAC ATTAGAAAAA ACTTCAAAAG TCTGCCT (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO:4: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SÉQUENCE: (A) LONGUEUR : paires de bases (B) TYPE : nucléotide(C) NOMBRE DE BRINS : (D) CONFIGURATION : (ii) TYPE DE MOLECULE : (xi) DESCRIPTION DE LA SÉQUENCE : ID NO:4: CGGACATCCA AAGTGATGGG AAACG 25 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO:5: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SÉQUENCE: (A) LONGUEUR : paires de bases (B) TYPE : (C) NOMBRE DE BRINS : (D) CONFIGURATION : (ii) TYPE DE MOLECULE : (xi) DESCRIPTION DE LA SÉQUENCE : ID NO:5: GGACAGGAAA GTAAGACTGA GAAGGC 26 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO:6: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SÉQUENCE: (A) LONGUEUR : paires de bases (B) TYPE : (C) NOMBRE DE BRINS : (D) CONFIGURATION : (ii) TYPE DE MOLECULE : (xi) DESCRIPTION DE LA SÉQUENCE : ID NO:6: CCT AGA ACG TAT TCT GGA GAA TTG GG (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO:7: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SÉQUENCE: (A) LONGUEUR : de bases (B) TYPE : (C) NOMBRE DE BRINS : (D) CONFIGURATION : (ii) TYPE DE MOLECULE : (xi) DESCRIPTION DE LA SÉQUENCE : ID NO:7: TGG CTC TCA ATG GTC AAA CAT ACC CG (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO:8: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SÉQUENCE: (A) LONGUEUR : paires de bases (B) TYPE : (C) NOMBRE DE BRINS : (D) CONFIGURATION : linéaire(ii) TYPE DE MOLECULE : (xi) DESCRIPTION DE LA SÉQUENCE : ID NO:8: ATG GGA AAC GTT CCC CCC GAG (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO:9: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SÉQUENCE: (A) LONGUEUR : paires de bases (B) TYPE : (C) NOMBRE DE BRINS : (D) CONFIGURATION : (ii) TYPE DE MOLECULE : (xi) DESCRIPTION DE LA SÉQUENCE : ID NO:9: GGC CTA AGG CAG ACT TTT GAA (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 10 : (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR : aminés (B) TYPE : aminé (C) NOMBRE DE BRINS : (D) CONFIGURATION : (ii) TYPE DE MOLECULE : (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE : ID NO: 10 : MGSSHHHHHHSSGLVP RGSHMASMTGGQQMGR IMGNIPPKAKT PLRCILENWD QCDTQTLRKK RFIFFCSTAW PQYPLQGRET WLPEGSINYN IILQLDLFCR KEGKWSEVPY VQTFFSLRDN SQLCKKCGLC PTGSPQSPPP YPSVPPPTPS STNKDPPLTQ TVQKEIDKGV NNEPKSANIP RLCPLQAVRG GEFGPARVPV PFSLSDLKQI KIDLGKFSDN PDGYIDVLQG LGQSFDLTWR DIMLLLNQTL TPNERSAAVT AAREFGDLWY LSQVNNRMTT EERTTPTGQQ AVPSVDPHWD TESEHGDWCH KHLLTCVLEG LRKTRKKPMN YSMMSTITQG KEENPTAFLD RLREALRKHT SLSPDSIEGQ LILKDKFITQ SAADIRKNFK SLPKLAAALEHHHHHH (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 11: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR : aminés (B) TYPE : aminé (C) NOMBRE DE BRINS : (D) CONFIGURATION : (ii) TYPE DE MOLECULE : (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE : ID NO: 11: Met Ala Ser Met Thr Gly Gly Gln Gln Met Gly Arg Ile Met Gly Asn Ile Pro Pro Lys Ala Lys Thr Pro Leu Arg Cys Ile Leu Glu Arg Ile Leu Glu Asn Trp Asp Gln Cys Asp Thr Gln Thr Leu Arg Lys Lys Arg Phe Ile Phe Phe Cys Ser Thr Ala Trp Pro Gln Tyr Pro Leu Gln Gly Arg Glu Thr Trp Leu Pro Glu Gly Ser Ile Asn Tyr Asn Ile Ile Leu Gln Leu Asp Leu Phe Cys Arg Lys Glu Gly Lys Trp Ser Glu Val Pro Tyr Val Gln Thr Phe Phe Ser Leu Arg Asp Asn Ser Gln Leu Cys Lys Lys Cys Gly Leu Cys Pro Thr Gly Ser Pro Gln Ser Pro Pro Pro Tyr Pro Ser Val Pro Ser Pro Thr Pro Ser Ser Thr Asn Lys Asp Pro Pro Leu Thr Gin Thr Val Gin Lys Glu Ile Asp Lys Gly Val Asn Asn Glu Pro Lys Ser Ala Asn Ile Pro Arg Leu Cys Pro Leu Gin Ala Val Arg Gly Gly Glu Phe Gly Pro Ala Arg Val Pro Val Pro Phe Ser Leu Ser Asp Leu Lys Gin Ile Lys Ile Asp Leu Gly Lys Phe Ser Asp Asn Pro Asp Gly Tyr Ile Asp Val Leu Gin Gly Leu Gly Gin Ser Phe Asp Leu Thr Trp Arg Asp Ile Met Leu Leu Leu Asn Gln Thr Leu Thr Pro Asn Glu Arg Ser Ala Ala Val Thr Ala Ala Arg Glu Phe Gly Asp Leu Trp Tyr Leu Ser Gin Ala Asn Asn Arg Met Thr Thr Glu Glu Arg Thr Thr Pro Thr Gly Gln Gin Ala Val Pro Ser Val Asp Pro His Trp Asp Thr Glu Ser Glu His Gly Asp Trp Cys His Lys His Leu Leu Thr Cys Val Leu Glu Gly Leu Arg Lys Thr Arg Lys Lys Pro Met Asn Tyr Ser Met Met Ser Thr Ile Thr Gin Gly Lys Glu Glu Asn Leu Thr Ala Phe Leu Asp Arg Leu Arg Glu Ala Leu Arg Lys His Thr Ser Leu Ser Pro Asp Ser Ile Glu Gly Gin Leu Ile Leu Lys Asp Lys Phe Ile Thr Gln Ser Ala Ala Asp Ile Arg Lys Asn Phe Lys Ser Leu Pro Lys Leu Ala Ala Ala Leu Glu His His His His His His (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID N0:12: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SÉQUENCE: (A) LONGUEUR : paires de bases (B) TYPE : (C) NOMBRE DE BRINS : (D) CONFIGURATION : (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (xi) DESCRIPTION DE LA SÉQUENCE : ID N0:12: CTAGAACGTA TTCTGGAGAA TTGGGA 26 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID N0:13: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SÉQUENCE: (A) LONGUEUR : paires de bases (B) TYPE : (C) NOMBRE DE BRINS : (D) CONFIGURATION : (ii) TYPE DE MOLECULE : (xi) DESCRIPTION DE LA SÉQUENCE : ID N0:13: CCTAAGGCAG ACTTTTGAAG 20 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID N0:14: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SÉQUENCE: (A) LONGUEUR : paires de bases (B) TYPE : (C) NOMBRE DE BRINS : (D) CONFIGURATION : (ii) TYPE DE MOLECULE : (xi) DESCRIPTION DE LA SÉQUENCE : ID N0:14: TTTGGTAATA CGACTCACTA TAGGGCAGCC ACCATGGGAA ACGTTCCCCC CGAG 54 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID N0:15: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SÉQUENCE: (A) LONGUEUR: 44 paires de bases (B) TYPE : (C) NOMBRE DE BRINS : (D) CONFIGURATION : (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN. (xi) DESCRIPTION DE LA SÉQUENCE : ID N0:15: TTTTTTTTTT TTTTTTTTTC AGGCTGCGCC AGTGTCCAGG AGAC (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID N0:16: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SÉQUENCE: (A) LONGUEUR : paires de bases (B) TYPE : (C) NOMBRE DE BRINS : (D) CONFIGURATION : (ii) TYPE DE MOLECULE : (xi) DESCRIPTION DE LA SÉQUENCE : ID N0:16: TGTCCGCTGT GCTCCTGATC 20 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID N0:17: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SÉQUENCE: (A) LONGUEUR: 44 paires de bases (B) TYPE : (C) NOMBRE DE BRINS : (D) CONFIGURATION : linéaire(ii) TYPE DE MOLECULE : (xi) DESCRIPTION DE LA SÉQUENCE : ID NO:17: TTTTTTTTTT TTTTTTTTTC AGGCTGCGCC AGTGTCCAGG AGAC 44 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID N0:18: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SÉQUENCE: (A) LONGUEUR : paires de bases (B) TYPE : (C) NOMBRE DE BRINS : (D) CONFIGURATION : linéaire(ii) TYPE DE MOLECULE : (xi) DESCRIPTION DE LA SÉQUENCE : ID N0:18: TCAGGGATAGCCCCCATCTATTTGGCCAGGCATTAGCCCAAGACTTGAGCCAGTTCTCATACCTGGATAT 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(xi) DESCRIPTION DE LA SÉQUENCE : ID N0:28: GACTTCCCAA ATACCAGAGG AAGCAGAGTG GTTTACAGTC CTGGACCTTC AGGATGCCTT 60 CTTCTGCATC CCTGTACATC CTGACTCTCA ATTCTTGTTT GCCTTTGAAG ATACTTCAAA 120 CCCAGCATCT CAACTCACCT GGACTATTTT ACCCCAAGGG TTCAGGGATA GTCCCCATCT 180 ATTTGGCCAG GCATTAGCCC AAGACTTGAG CCAATCCTCA TACCTGGACA CTTGTCCTTC 240 GGTAGGTGGA TGATTTACTT TTGGCCGCCC ATTCAGAAAC CTTGTGCCAT CAAGCCACCC 300 AAGCGCTCTT CAATTTCCTC GCTACCTGTG GCTACATGGT TTCCAAACCA AAGGCTCAAC 360 TCTGCTCACA GCAGGTTACT TAGGGCTAAA ATTATCCAAA GGCACCAGGG CCCTCAGTGA 420 GGAACACATC CAGCCTATAC TGGCTTATCC TCATCCCAAA ACCCTAAAGC AACTAAGGGG 480 ATTCCTTGGC GTAATAGGTT TCTGCCGAAA ATGGATTCCC AGGTATGGCG AAATAGCCAG 540 GTCATTAAAT ACACTAATTA AGGAAACTCA GAAAGCCAAT ACCCATTTAG TAAGATGGAC 600 AACTGAAGTA GAAGTGGCTT TCCAGGCCCT AACCCAAGCC CCAGTGTTAA GTTTGCCAAC 660 AGGGCAAGAC TTTTGTTCAT ATGTCACAGA AAAAACAGGA ATAGCTCTAG GAGTCCTTAC 720 ACAGATCCGA GGGATGAGCT TGCAACCTGT GGCACACCTG ACTAAGGAAA TTGATGTAGT 780 GGCAAAGGGT TGACCTCATT GTTTACGGGT AGTGGTGGCA 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CCTCACGAGG CAGTTTTCTC 1680 CCCTCGGGAC GGTTAGCCAC TGAAGAAGGG AAAATACTTT TGCCTGCAAC TATCCAATGG 1740 AAATTACTTA AAACCCTTCA TCAAACCTTT CACTTAGGCA TCGATAGCAC CCATCAGATG 1800 GCCAAATCAT TATTTACTGG ACCAGGCCTT TTCAAAACTA TCAAGCAGAT AGTCAGGGCC 1860 TGTGAAGTGT GCCAGAGAAA TAATCCCCTG CCTTATCGCC AAGCTCCTTC AGGAGAACAA 1920 AGAACAGGCC ATTACCCTGG AGAAGACTGG CAACTGATTT TACCCACAAG CCCAAACCTC 1980 AGGGATTTCA GTATCTACTA GTCTGGGTAG ATACTTTCAC GGGTTGGGCA GAGGCCTTCC 2040 CCTGTAGGAC AGAAAAGGCC CAAGAGGTAA TAAAGGCACT AGTTCATGAA ATAATTCCCA 2100 GATTCGGACT TCCCCGAGGC TTACAGAGTG ACAATAGCCC TGCTTTCCAG GCCACAGTAA 2160 CCCAGGGAGT ATCCCAGGCG TTAGGTATAC GATATCACTT ACACTGCGCC TGAAGGCCAC 2220 AGTCCTCAGG GAAGGTCGAG AAAATGAATG AAACACTCAA AGGACATCTA AAAAAGCAAA 2280 CCCAGGAAAC CCACCTCACA TGGCCTGTTC TGTTGCCTAT AGCCTTAAAA AGAATCTGCA 2340 ACTTTCCCCA AAAAGCAGGA CTTAGCCCAT ACGAAATGCT GTATGGAAGG CCCTTCATAA 2400 CCAATGACCT TGTGCTTGAC CCAAGACAGC CAACTTAGTT GCAGACATCA CCTCCTTAGC 2460 CAAATATCAA CAAGTTCTTA AAACATTACA AGGAACCTAT CCCTGAGAAG AGGAAAAGAA 2520 TATTCCACCC AAGTGACATG GTATTAGTCA AGTCCCTTCC CTCTAATTCC CCATCCCTAG 2580 ATACATCCTG GGAAGGACCC TACCCAGTCA TTTTATCTAC CCCAACTGCG GTTAAAGTGG 2640 CTGGAGTGGA GTCTTGGATA CATCACACTT GAGTCAAATC CTGGATACTG CCAAAGGAAC 2700 CTGAAAATCC AGGAGACAAC GCTAGCTATT CCTGTGAACC TCTAGAGGAT TTGCGCCTGC 2760 TCTTCAAACA ACAACCAGGA GGAAAAATCG AAGCTGTAAA ACTACAAATG GAGCCCAAGA 2820 TGCAGTCCAA GACTAAGATC TACCGCAGAC CCCTGGACCG GCCTGTTAGC CCACGATCTG 2880 ATGTTAATGA CATCAAAGGC ACCCCTCCTG AGGAAATCTC AGCTGCACAA CCTCTACTAC 2940 GCCCCAATTC AGCAGGAAGC AGTTAGAGCG GTCGTCGGCC AACCTCCCCA ACAGCACTTA 3000 GGTTTTCCTG TTGAGATGGG GGACTGAGAG ACAGGACTAG CTGGATTTCC TAGGCTGATT 3060 AAGAATCCCT AAGCCTAGCT GGGAAGGTGA CCACATCCAC CTTTAAACAC GGGGCTTGCA 3120 ACTTAGCTCA CACCTGACCA ATCAGAGAGC TCACTAAAAT GCTAATTAGG CAAAGACAGG 3180 AGGTAAAGAA ATAGCCAATC ATTTATTGCC TGAGAGCACA GCAGGAGGGA CAATGATCGG 3240 GATATAAACC CAAGTTTTCG AGCCGGCAAC GGCAACCCCC TTTGGGTCCC CTCCCTTTGT 3300 ATGGGAGCTC TGTTTTCATG CTATTTCACT CTATTAAATC TTGCAACTGC AAAAAAAAAA 3360 AAAAAAAAAA AA 3372 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID N0:29: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SÉQUENCE: (A) LONGUEUR : paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS : (D) CONFIGURATION : (ii) TYPE DE MOLECULE : (xi) DESCRIPTION DE LA SÉQUENCE : ID N0:29: ACTGCACTCT TCTGGTCCAT GTTTCTTACG GCTCGAGCTG AGCTTTTGCT CACCGTCCAC 60 CACTGCTGTT TGCCACCACC GCAGACCTGC CGCTGACTCC CATCCCTCTG GATCCTGCAG 120 GGTGTCCGCT GTGCTCCTGA TCCAGCGAGG CGCCCATTGC CGCTCCCAAT TGGGCTAAAG 180 GCTTGCCATT GTTCCTGCAC GGCTAAGTGC CTGGGTTTGT TCTAATTGAG CTGAACACTA 240 ATCACTGGGT TCCATGGTTC TCTTCTGTGA CCCACGGCTT CTAATAGAAC TATAACACTT 300 ACCACATGGC CCAAGATTCC ATTCCTTGGA ATCCGTGAGG CCAAGAACTC CAGGTCAGAG 360 AATACGAGGC TTGCCACCAT CTTGGAAGCG GCCTGCTACC GTCTTGGAAG TGGTTCACCA 420 CCATCTTGGG AGCTCTGTGA GCAAGGACCC CCCGGTAACA TTTTGGCAAC CAACGACGGA 480 CATCCAAAGT GATGGGAAAC GTTCCCCGCA AGACAAAAAC GCCCCTAAGA CGTATTCTGG 540 AGAATTGGGA CCAATTTGAC CCTCAGACAC TAAGAAAGAA ACGACTTATA TTCTTCTGCA 600 GTGCCGCCTG GCACTCCTGA GGGAAGTATA AATTATAACA CCATCTTACA GCTAGACCTC 660 TTTTGTAGAA AAGGCAAATG GAGTGAAGTG CCATAAGTAC AAACTTTCTT TTCATTAAGA 720 GACAACTCAC AATTATGTAA AAAGTGTGAT TTATGCCCTA CAGGAAGCCT TCAGAGTCTA 780 CCTCCCTATC CCAGCATCCC CGACTCCTTC CCCAACTAAT AAGGACCCCC CTTCAACCCA 840 AATGGTCCAA AAGGAGATAG ACAAAAGGGT AAACAGTGAA CCAAAGAGTG CCAATATTCC 900 CCAATTATGA CCCCTCCAAG CAGTGGGAGG AAGAGAATTC GGCCCAGCCA GAGTGCATGT 960 GCCTTTTTCT CTCCCAGACT TAAAGCAAAT AAAAACAGAC TTAGGTAAAT TCTCAGATAA 1020 CCCTGATGGC TATATTGATG TTTTACAAGG GTTAGGACAA TTCTTTGATC TGACATGGAG 1080 AGATATAATG TCACTGCTAA ATCAGACACT AACCCCAAAT GAGAGAAGTG CCACCATAAC 1140 TGCAGCCTGA GGGTTTGGCG TCTCTGGTAT CTCAGTCAGG TCAATGGATA NGGATGACAA 1200 CAGAAGGAAA GANAATGATT CCCCACAGGC CAGCAGGCAG TTCCCAGTCT AGACCCTCAT 1260 TGGGACACAG AATCAGAACA TGGAGATTGG TGCTGCAGAC ATTTGCTAAC TTGTGTGCTA 1320 GAAGGACTAA GGAAAACTAG GAAGAAGTCT ATGAATTACT CAATGATGTC CACCATAACA 1380 CAGGGAAGGG AAGAAAATCC TACTGCCTTT CTGGAGAGAC TAAGGGAGGC ATTGAGGAAG 1440 CGTGCCTCTC TGTCACCTGA 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TGAAGTCTGG GCAACAGAAG GACAATATGG ACGAGCCAAA 2340 GAATGCCCGT CCTGTTCAAG TTAAACTAAA GG 2372 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID N0:30: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SÉQUENCE: (A) LONGUEUR : paires de bases (B) TYPE : (C) NOMBRE DE BRINS : (D) CONFIGURATION : (ii) TYPE DE MOLECULE : (xi) DESCRIPTION DE LA SÉQUENCE : ID N0:30: CAACAATCGG GATATAAACC CAGGCATTCG AGCTGGCAAC AGCAGCCCCC CTTTGGGTCC 60 CTTCCCTTTG TATGGGAGCT GTTTTCATGC TATTTCACTC TATTAAATCT TGCAACTGCA 120 CTCTTCTGGT CCATGTTTCT TACGGCTCGA GCTGAGCTTT TGCTCACCGT CCACCACTGC 180 TGTTTGCCAC CACCGCANAC CTGCCGCTGA CTCCCATCCC TCTGGATCCT GCAGGGTGTC 240 CGCTGTGCTC CTGATCCAGC GARGCGCCCA TTGCCGCTCC CAATTGGGCT AAAGGCTTGC 300 CATTGTNCCT GCACGGCTAA GTGCCTGGGT TTGTTCTAAT TGAGCTGAAC ACTANTCACT 360 GGGTTCCATG GTTCTCTTCT GTGACCCACG GCTTCTAATA KAACTATAAC ACTTACCACA 420 TGGCCCAAGA TTCCATTCCT TGGAATCCGT GAGGSCAACG AACTCCAGGT CAGAGAATAC 480 TTGGGAGCTC TGTGAGCAAG GACCCCCCGG TRACATTTTG GCRACCAMSR ACGGACATCC 600 MAAGTGATGG GAAACGTTCC CCGCAAGACA AAAACGCCCC TAAGACGTAT TCTGGARAAT 660 TGGGAMCAAT TTGACCCTCA GACACTAAGA AAGAAACGAC TTATATTCTT CTGCAGTGCC 720 GCCTGGCACT CCTGAGGGAA GTATAAATTA TAACACCATC TTACAGCTAG ACYTCTTTTG 780 TAGAAAAGGC AAATGGAGTG AAGTGCCATA AGTACAAACT TTCTTTTCAT TAAGAGACAA 840 CTCACAATTA TGTAAAAAGT GTGATTTATG CCCTACAGGA AGCCTTCAGA GTCTACCTCC 900 CTATCCCAGC ATCCCCGACT CCTTCCCCAM YTAATAAGGA CCCCCCTTCA ACCCAAATGG 960 TCCAAAAGGA GATAGACAAA AGGGTAAACA GTGAACCAAA GAGTGCCAAT ATTCCCCAAT 1020 TATGACCCCT CCCAAGCAGT GGGAGGAAGA GAATTCGGCC CAGCCAGAGT GCATGTGCYT 1080 TTTYYTCTCC CAGACTTAAA GCAAATAAAA ACAGACTTAG GTAAATTCTC AGATAAYCCT 1140 GATGGCTATA TTGRTGTTTT ACAAGGGTTA GGACAATTCT TTGATCTGAC ATGGAGAGAT 1200 ATATATGTCA CTGCTAAATC AGACACTAAC CCCAAATGAG AGAAGTGCCA CCATAACTGC 1260 AGCCTGAGRG TTTGGCGATC TCTGGTATCT CAGTCAGGTC AATGGATANG GATGACAACA 1320 GAAGGAAAGA NAATGATTCC CCACAGGCCA GCARGCAGTT CCCAGTCTAS ACCCTCATTG 1380 GGGACACAGA AATCAGTAAC ATGGGAGATT GGTGCTGCAG ACATTTGCTA ACTTGTGTGC 1440 TASAAGGACT AAGGAAAACT ASGAAGAAAR TCTAYGAATT ACTCAATGAT GTCCACCATA 1500 ACACAGGGGA AGGGAAGAAA ATCCTACTGC CTTTCTGGAG AGACTAAGGG AGGCATTGAG 1560 GAAGCGTGCC TCTCTGTCAC CTGACTCTTC TGAAGGCCAA CTAATCTTAA AGCGTAAGTT 1620 TATCACTCAG TCAGCTGCAG ACATTAGAAA AAACTTCAAA AGTCTGCCGT AGGCCCGGAG 1680 CAAAACTTAG AAACCCTATT GAACTTGGCA ACYTCGGTTT TTTATAATAG AGATCAGGAG 1740 GAGCAGGCGG AACAGGACAA ACGGGATTAA AAAAAAGGCC ACCGCTTTAG TCATGACCCT 1800 CAGGCAAGTG GACTTTGGAG GCTCTGGAAA AGGGAAAAGC TGGGCAAATT GAATGCCTAA 1860 TAGGGCTTGC TTCCAGTGCG GTCTACAAGG ACACTTTAAA AAAGATTGTC CAAGTAGAAG 1920 TAAGCCGCCC CTTCGTCCAT GCCCCTTATT TCAAGGGAAT CACTGGAAGG CCCACTGCCC 1980 CAGGGGACAA AGGTCTTTTG AGTCAGAAGC CACTAACCAG ATGATCCAGC AGCAGGACTG 2040 AGGGTGCCTG GGGCAAGCGC CATCCCATGC CATCACCCTC ACAGAGCCCT GGGTATGCTT 2100 GACCATTGAG GGCCAGGAAG GTTGTCTCCT GGACACTGGT GCGGTCTTCT TAGTCTTACT 2160 CTTCTGTCCC GGACAACTGT CCTCCAGATC TGTCACTATT CTGAGGGGGT CCNTAAGACG 2220 GGCAGTCACT AGATACTTTY TCCCAGCCAC TAAGTTATGA ACTGGGGAGC TTTATTCTTT 2280 TCACATGCTTTTCTAATTAT GCTTGAAAGC CCCACTACCT TGTTAGGGAG AGACATTCTA 2340 GCAAAAGCAG GGGCCATTAT ACACCTGAAC ATAGGAGAAG GAACACCCGT TTGTTGTNCC 2400 CCTGCTTGAG GAAGGAATTA ATCCTGAAGT CTGGGCAACA GAAGGACAAT ATGGACGAGC 2460 CAAAGAATGC CCGTCCTGTT CAAGTTAAAC TAAAGGATTC CACTTCCTTT CCCTACCAAA 2520 GGCAGTACCC CCTCAGACCC AAGGCCCAAC AAGGATTCCA AAAGATTGTT AAGGACTTAA 2580 AAGCCCAAGG CTTAGTAAAA CCATGCATAA CTCCCTGCAG TAATTCCGTA GTGGATTGAG 2640 AGGCCGTTGT CCTTTTATAC CCAGCTGTAC CTAGCCCTTA TACTGTGMYT TCCCAAATAC 2760 CAGAGGAAGC AGAGTGGTTT ACASTCCTGG ACCTTMAGGA TGCCTTCTTC TGCATCCCTG 2820 TACATCCTGA CTCTCAATTC TTGTTTGCCT TTGAAGATAC TTCAAACCCA RCATCTCAAC 2880 TCACCTGGAC TRTTTTACCC CAAGGGTTCA GGGATAGYCC CCATCTATTT GGCCAGGCAT 2940 TAGCCCAAGA CTTGAGYCAR TYMTCATACC TGGACACTCT TGTCCTTCRG TAKGTGGATG 3000 ATTTACTTTT RGCYGCCYRT TCAGAAACCT TGTGCCATCA AGCCACCCAA GCRCTCTTMA 3060 ATTTCCTCGC YACCTGTGGC TACAWGGTTT CCAAACSARA RGCTCARCTC TGCTCACAGC 3120 AGGTTAAATA CTTAGGRCTA ARATTATCCA AAGGCACCAR GGCCCTCAGT GAGGAAYRYA 3180 TCCAGCCTAT ACTGGCTTAT CCTCATCYCA AAACCCTAAA GCAACTAAGR GRRTTCCTTG 3240 GCRTAAYAGG YTTCTGCCGA AWATGGATTC CCCAGGTWTG GCRAAATAGC CAGGYCATTA 3300 WATACASTAA TTAAGGAAAC TCAGAAAGCC AATACCCATT TARTAAGATG GAYAMCTGAA 3360 GYMRAAGTGG CTTTCCAGGC CCCTAAAGAA GGCCTTAAAC CCAAGYCCCA GTGTTAAGYT 3420 TGCCAACRGG GCAAGACTTT TSTTYATAYR TCACAGAAAA AAACAGRAAY AGCTCTRGGA 3480 GTCCTTACAC AGRTCCRAGG GAYGAGCTTG CAACCYRTGG CRYACCTGAS TAAGGAAAYT 3540 GATGTAGTGG CAAAGGGTTG RCYTCATTGT TTAYGGGTAG TGGTGGCAGT AGCAGTYKTA 3600 GTATCTGAAG CAGTTAAAAT AATACAGGGR AGAGATCTTA CTGTGTGGAC ATCTCATGAK 3660 GTGAAYRGCA TACTCACTGC TAAAGGAGAC TTGTGGCTGT CAGACAACYG TTTACTTAAA 3720 TRTCAGGCTC TATTACTTGA ARGGCCAGTG CTGCRACTGT GCACTTGTGC AACTCTTAAC 3780 CCAGYCNCAT TTCTTCCAGA CAATGAAGAA AAGATARAAY ATAACTGTCA ACAARTAATT 3840 TCTCAAACCT ATGCCACTCG AGGGGACCTT YTAGARGTTC CYTTGACTGA TCCYGACCTT 3900 CAACTTGTAT ACTGATGGAA GTTCCTTTGT AGAAAAAGGA CTTCGAAAAG YGGGGTATGC 3960 AGTGGTCAGT GATAATGGAA TAYTTGAAAG TAATCCCCTC ACTCCAGGAA CTAGTGCTYA 4020 GCTRGCAGAA CTAATAGCCY TCAYTKGGGC ACTAGAATTA GGAGAAGRAA AAAGGGYAAA 4080 TATATATACA GACTCTRART ATGCTYACCT AGTCNTCCAT GCCCATGMRG CAATATGSAR 4140 AGAAAGGGAA TTCCTAACTT CYGAGRGAAC ACCTATCAMA CATCAGGAAG CCATTAGGAR 4200 ATTATTAYTG GCWGTACAGA AACCTARAGA GGTGGMAGTC TTACACTGCY GGGGTCATCA 4260 NAAAGGAAAG RAAAGGGAAA TASAAGRGAA YTGCCAAGCA KATATTGAAG CMAAAAGAGC 4320 TGCAAGGCAG GACCCTCCAT TAGAAATGCT TATTAAACTT CCCTTAGTAT AGGGTAATCC 4380 CTTCCGGGAA ACCAAGCCCC AGTACTCAGC AGGAGAAACA GAATGGGGAA CCTCACGAGG 4440 CAGTTTTCTC CCCTCGGGAC GGTTAGCCAC TGAAGAAGGG AAAATACTTT TGCCTGCAAC 4500 TATCCAATGG AAATTACTTA AAACCCTTCA TCAAACCTTT CACTTAGGCA TCGATAGCAC 4560 CCATCARATG GCCAAATCAT TATTTACTGG ACCAGGCCTT TTCAAAACTA TCAAGCARAT 4620 AKTCAGGGCC TGTGAAKTGT GCCARARAAA TAATCCCCTG CCTYATCGCC AAGCTCCTTC 4680 AGGARAACAA ARAACAGGCC ATTACCCTGR ARAARACTGG CAACTGATTT TACCCACAAG 4740 CCCAAACCTC AGGGATTTCA GTATCTACTA GTCTGGGTAR ATACTTTCAC GGGTTGGGCA 4800 ATAATTCCCA GATTCGGACT TCCCCGAGGC TTACAGAGTG ACAATAGCCC TGCTTTCCAG 4920 GCCACAGTAA CCCAGGGAGT ATCCCAGGCG TTAGGTATAC GATATCACTT ACACTGCGCC 4980 TGAAGGCCAC AGTCCTCAGG GAAGGTCGAG AAAATGAATG AAAYACTCAA AGGACATCTA 5040 AAAAAGCAAA CCCAGGAAAC CCACCTCACA TGGCCTGYTC TGTTGCCTAT AGCCTTAAAA 5100 AGAATCTGCA ACTTTCCCCA AAAAGCAGGA CTTAGCCCAT ACGAAATGCT GTATGGAAGG 5160 CCCTTCATAA CCAATGACCT TGTGCTTGAC CCAAGACAGC CAACTTAGTT GCAGACATCA 5220 CCTCCTTAGC CAAATATCAA CAAGTTCTTA AAACATTACA AGGAACCTAT CCCTGAGAAG 5280 AGGGAAAAGA ACTATTCCAC CCWWGTGACA TGGTATTAGT CAAGTCCCTT CYCTCTAATT 5340 CCCCATCCCT AGATACATCC TGGGAAGGAC CCTACCCAGT CATTTTATYT ACCCCAACTG 5400 CGGTTAAAGT GGCTGGAGTG GAGTCTTGGA TACATCACAC TTGAGTCAAA TCCTGGATAC 5460 TGCCAAAGGA ACCTGAAAAT CCAGGAGACA ACGCTAGCTA TTCCTGTGAA CCTCTAGAGG 5520 ATTTGCGCCT GCTCTTCAAA CAACAACCAG GAGGAAAGTA ACTAAAATCA TAAATCCCCC 5580 ATGGSCCTCC CTTATCATAT TTTTCTCTKT ASTGTTSTTT YACCCTSTTT CACTCTCACT 5640 GCACCCCCTC CATGCCGCTG TATGACCAGT AGCTCCCCTY ACCMAGAGTT TCTATGGAGA 5700 ATGCAGCGTC CCGGAAATAT TGATGCCCCA TCGTATAGGAG TCTTTSTAAG GGAACCCCC 5760 ACCTTCACTG CCCACACCCA TATGCCCCGC AACTGCTATC ACTCTGCCAC TCTTTGCATG 5820 CATGCAAATA CTCATTATTG GACAGGAAAA ATGATTAATC CTAGTTGTCC TGGAGGACTT 5880 GGAGTCACTG TCTGTTGGAC TTACTTCACC CAAACTGGTA TGTCTGATGG GGGTGGAGTT 5940 CAAGATCAGG CAAGAGAAAA ACATGTAAAA GAAGTAATCT CCCAACTCAC CSGGGTACAT 6000 GGCACCTCTA GCCCCTACAA AGGACTAGAT CTCTCAAAAC TACATGAAAC CCTCCGTACC 6060 CATACTCGCC TGGTAAGCCT ATTTAATACC ACCCTCACTG GGCTCCATGA GGTCTCGGCC 6120 CAAAACCCTA CTAACTGTTG GATATGCCTC CCCCTGAACT TCARGCCATA TGTTTCAATC 6180 CCTGTACCTG AACAATGGAA CAACTTCAGC ACAGAAATAA ACACCACTTC CGTTTTAGTA 6240 GGACCTCTTG TTTCCAATST GGAAATAACC CATACCTCAA ACCTCACCTG TGTAAAATTT 6300 AGCAATACTA CATACACAAC CAACTCCCAA TGCATCAGGT GGGTAACTCC TCCCACACAA 6360 ATAGTCTGCC TACCCTCAGG AATATTTTTT GTCTGTGGTA CCTCAGCCTA TCGTTGTTTG 6420 AATGGCTCTT CAGAATCTAT GTGCTTCCTC TCATTCTTAG TGCCCCCYAT GRCCATCTAC 6480 ACTGAACAAG ATTTATACAG TTATGTCATA TCTAAGCCCC GCAACAAAAG AGTACCCATT 6540 CTTCCTTTTG TTATAGGAGC AGGAGTGCTA GGTGCACTAG GTACTGGCAT TGGCGGTATC 6600 ACAACCTCTA CTCAGTTCTA CTACAAACTA TCTCAAGAAC TAAATGGGGA CATGGAACGG 6660 GTCGCCGACT CCCTGGTCAC CTTGCAAGAT CAACTTAACT CCCTAGCAGC AGTAGTCCTT 6720 CRAAATCGAA GAGCTTTAGA CTYGCTAACC GCTGARAGAG GGGGAACCTG TTTATTTTTA 6780 GGGGAAGAAT GCTGTTATTA TGTTAATCAA TCCGGAATCG TCACTGAGAA AGTTRAAGAA 6840 ATTCSAGATC GAATACAACG TAKAGCAGAR GAGCTTCGAA ACACTGGACC CTGGGGCCTC 6900 CTCAGCCRAT GGATGCCCTG GATTCTCCCC TTCTTAGGAC CTCTAGCAGC TATAATATTG 6960 GAAGCTGTRA AACTACAAAT GGAGCCCAAG ATGCAGTCCA AGACTAAGAT CTACCGCAGA 7080 CCCCTGGACC GGCCTGYTAG CCCACGATCT GATGTTAATG ACATCAAAGG CACCCCTCCT 7140 GAGGAAATCT CAGCTGCACA ACCTCTACTA CGCCCCAATT CAGCAGGAAG CAGTTAGAGC 7200 GGTSGTCGGC CAACCTCCCC AACAGCACTT AGGTTTTCCT GTTGAGATGG GGGACTGAGA 7260 GACAGGACTA GCTGGATTTC CTAGGCTGAY TAAGAATCCY TAAGCCTAGS TGGGAAGGTG 7320 ACCACATCCA CCTTTAAACA CGGGGCTTGC AACTTAGYTC ACACCTGACC AATCAGAGAG 7380 CTCACTAAAA TGCTAATTAG GCAAAGACAG GAGGTAAAGA AATAGCCAAT CATYTATTGC 7440 MTGAGAGCAC AGCAGGAGGG ACAATGATCG GGATATAAAC CCAAGTYTTC GAGCCGGCAA 7500 CGGCAACCCC CTTTGGGTCC CCTCCCTTTG TATGGGAGCT CTGTTTTCAT GCTATTTCAC 7560 TCTATTAAAT CTTGCARCTG CR 7582 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID N0:31: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SÉQUENCE: (A) LONGUEUR : paires de bases (B) TYPE : (C) NOMBRE DE BRINS : (D) CONFIGURATION : (ii) TYPE DE MOLECULE : (xi) DESCRIPTION DE LA SÉQUENCE: SEQ ID N0:31: MGNIPPKAKT PLRCILENWD QCDTQTLRKK RFIFFCSTAW PQYPLQGRET 50 WLPEGSINYN IILQLDLFCR KEGKWSEVPY VQTFFSLRDN SQLCKKCGLC 100 PTGSPQSPPP YPSVPPPTPS STNKDPPLTQ TVQKEIDKGV NNEPKSANIP 150 RLCPLQAVRG GEFGPARVPV PFSLSDLKQI KIDLGKFSDN PDGYIDVLQG 200 LGQSFDLTWR DIMLLLNQTL TPNERSAAVT AAREFGDLWY LSQVNNRMTT 250 EERTTPTGQQ AVPSVDPHWD TESEHGDWCH KHLLTCVLEG LRKTRKKPMN 300 YSMMSTITQG KEENPTAFLD RLREALRKHT SLSPDSIEGQ LILKDKFITQ 350 SAADIRKNFK SLP 363 REVENDICATIONS 1. Fragment nucléique endogène, de type rétroviral, à l'état isolé, ledit fragment étant caractérisé en ce qu'il comprend, ou consiste en, au moins une partie du gène gag d'un rétrovirus endogène associé à une maladie auto-immune ou à des insuccès de grossesse ou pathologies de la grossesse, ladite partie au moins codant, directement ou indirectement, pour un produit d'expression, ou le complémentaire dudit fragment. 2. Fragment selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il comprend, ou consiste en, ledit gène gag entier. 3. Fragment selon la revendication 1, caractérisé en ce que la partie au moins code pour la matrice et la capside. 4. Fragment selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il comprend SEQ ID NO:1, SEQ ID NO: 2, SEQ ID NO:3, ou le complémentaire de l'une quelconque desdites séquences. 5. Fragment selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il consiste en SEQ ID NO:1, SEQ ID NO:2, SEQ ID NO:3, ou le complémentaire de l'une quelconque desdites séquences. 6. Fragment selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il est localisé sur au moins l'un des chromosomes humain 1,3, 6,7 et 16. 7. Fragment selon la revendication 6, caractérisé en ce qu'il est localisé sur au moins le chromosome 3. 8. Fragment selon la revendication 1, caractérisé en ce que le produit d'expression est de l'ARN messager. 9. Fragment selon la revendication 1, caractérisé en ce que le produit d'expression est immunologiquement reconnu par des anticorps présents dans un échantillon biologique d'un patient atteint d'une maladie auto-immune. 10. Fragment selon la revendication 9, caractérisé en ce que l'échantillon biologique est un fluide biologique choisi parmi le sérum, le plasma, le liquide synovial et l'urine. 11. Fragment selon la revendication 9, caractérisé en ce que la maladie auto-immune est la sclérose en plaques. 12. Produit de transcription endogène, à l'état isolé, susceptible d'être obtenu par transcription d'au moins ladite partie du gène gag d'un fragment selon l'une quelconque des revendications 1 à 11. 13. Procédé de détection de séquences nucléotidiques endogènes appartenant à un fragment tel que défini selon l'une des revendications 1 à 11, caractérisé en ce que : - on effectue au préalable une étape d'extraction de l'ADN cellulaire d'un tissu ou fluide biologique, on réalise au moins un cycle d'amplification de l'ADN cellulaire, telle que par PCR, au moyen d'amorces notamment choisies parmi SEQ ID NO:4 à SEQ ID NO: 9 et SEQ ID NO :12 à SEQ ID NO : 17, on met en contact l'ADN cellulaire présent dans l'échantillon avec une sonde déterminée susceptible de s'hybrider avec un fragment tel que défini précédemment et de former un complexe d'hybridation, ladite sonde comprenant au moins 15 nucléotides, de préférence 17 et avantageusement 19 nucléotides contigus de SEQ ID NO : 3 ou consistant en SEQ ID NO : 3, dans des conditions appropriées permettant l'hybridation, en particulier dans des conditions de forte stringence, et on détecte les complexes d'hybridation formés par tout moyen approprié. 14. Procédé selon la revendication 13, caractérisé en ce que la sonde est marquée par un traceur, tel que par exemple un traceur radioactif ou une enzyme. 15. Procédé de détection de séquences nucléotidiques endogènes appartenant à un fragment tel que défini selon l'une des revendications 1 à 11, caractérisé en ce que : - on effectue au préalable une étape d'extraction de l'ADN cellulaire d'un tissu ou fluide biologique, éventuellement issu de chromosomes isolés, on réalise au moins un cycle d'amplification de l'ADN cellulaire, telle que par PCR, au moyen d'amorces notamment choisies parmi SEQ ID NO:4 à SEQ ID NO:9 et SEQ ID NO : 12 à SEQ ID NO : 17, - on effectue une étape de transcription/ traduction in vitro du produit amplifié, et - on fait réagir le produit issu de l'étape de transcription / traduction avec un sérum ou plasma d'un patient présentant une maladie auto-immune. 16. Procédé pour l'étude et/ou le suivi d'une prolifération cellulaire des cellules T in vitro selon lequel on met en contact les cellules T d'un patient avec soit des produits de transcription/ traduction (SEQ ID NO : 31), tels qu'obtenus selon le procédé de la revendication 15, soit des peptides de synthèse dérivés de ou appartenant à SEQ ID NO : 31. 17. Procédé de marquage moléculaire in situ de chromosomes isolés de patients dans lequel on utilise une sonde marquée, par tout traceur approprié, comprenant tout ou partie de SEQ ID NO : 3. 18. Protéine recombinante obtenue à partir d'une cassette d'expression dans un hôte bactérien caractérisée en ce que sa séquence protéique consiste en SEQ ID NO :31. 19. Protéine, selon la revendication 18, caractérisée en ce que l'hôte bactérien est E. coli. 20. Réactif pour la détection d'une maladie autoimmune ou un suivi de grossesse comprenant au moins un fragment selon l'une quelconque des revendications 1 à 11 ou une protéine selon les revendications 16,18 et 19. 21. Utilisation d'un fragment selon l'une quelconque des revendications 1 à 11 ou d'une protéine selon les revendications 16,18 et 19 pour détecter, dans un échantillon biologique, une susceptibilité à une maladie auto-immune ou un suivi de grossesse. 22. Utilisation selon la revendication 21, caractérisée en ce que la maladie auto-immune est la sclérose en plaques.