Brevet FR2786787A1 — publié le 20000609

I MÉTHODE D'ANALYSE IN VITRO D'UN PHÉNOTYPE CONNU À PARTIR D'UN ÉCHANTILLON D'ACIDES NUCLÉIQUES. La présente invention a pour objet une méthode d'analyse in vitro d'un phénotype connu à partir d'un échantillon d'acides nucléiques. La méthode de l'invention trouve tout particulièrement son application dans le domaine du diagnostic, o le phénotype recherché caractérise par exemple la présence de cellules cancéreuses, d'organismes pathogènes (bactériens ou viraux), d'une mutation spécifique, d'un gène étranger, d'une activité enzymatique. En effet, l'analyse d'un phénotype permet d'identifier une variation qualitative ou quantitative du produit final d'expression d'un ou plusieurs gènes. Le procédé de l'invention offre donc l'avantage d'identifier directement une manifestation apparente de la constitution du génome qui peut se traduire par exemple sous la forme d'un trait morphologique ou d'un syndrome clinique. Aujourd'hui, la recherche de séquences polynucléotidiques cibles représente un objectif majeur dans de nombreux laboratoires de recherche impliqués dans de nombreux domaines d'activité, et principalement dans le domaine médical ou agroalimentaire. Dans ces domaines, la recherche de séquences cibles visent par exemple: - Le diagnostic de virus à l'origine de maladies, telles que le Sida (HIV) ou l'hépatite B (HBV). - Le diagnostic spécifique de maladies d'origine bactérienne, telle que la tuberculose ou la lèpre. - Le diagnostic de mutations à l'origine de maladies génétiques ou de cancers cellulaires. - Le diagnostic d'une contamination bactérienne dans une chaîne agroalimentaire. - La recherche des microorganismes impliqués dans la corrosion biologiques des canalisations ou des containers utilisés dans des procédés industriels. La difficulté majeure des méthodes de diagnostic utilisées dans l'art antérieur réside dans la spécificité, la sensibilité, la rapidité et la reproductibilité du test de détection utilisé. En effet, lors d'un diagnostic de séquences par amplification PCR, on n'est pas sûr de la nature de l'amplicon, et dans le cas o la protéine analysée est recherchée par immunodétection, les résultats peuvent correspondre à une réaction croisée non spécifique. De plus dans ces deux cas, on ne connaît pas l'activité de la protéine recherchée. Le but de la présente invention est précisément d'offrir une méthode de détection de séquences polynucléotidiques ne présentant pas les inconvénients ci- dessus. Ce but est atteint grâce à l'analyse in vitro d'un phénotype connu à partir d'un échantillon d'acides nucléiques. On entend par phénotype, au sens de la présente invention, la manifestation d'une propriété observable correspondant à l'expression d'un ou plusieurs gènes. Cette manifestation peut se traduire par l'expression d'un trait morphologique, d'un syndrome clinique, d'une résistance à un composé toxique, de l'activité d'une protéine ou encore de la production d'une substance comme un métabolite, un antibiotique, etc.... Dans le cadre de cette définition, l'invention permet l'analyse in vitro d'un phénotype correspondant au résultat de l'expression de plusieurs gènes, les protéines correspondantes étant toutes nécessaires à l'expression dudit phénotype. Dans cette forme de réalisation de l'invention, les gènes codant pour ces protéines peuvent être situés: - sur le même fragment d'ADN, dans le cas d'un phénotype exprimé par un opéron, - à différents endroits de l'ADN génomique, dans le cas de certaines voies métaboliques. Le phénotype analysé selon le procédé de l'invention peut donc ne pas être seulement celui associé à une protéine, mais celui associé à un ensemble de protéines. Il s'agit par exemple, comme indiqué précédemment, d'un phénotype correspondant à la synthèse d'un métabolite (métabolite énergétique, antibiotique, etc...), à la dégradation d'un composé (de type nutriment ou xénobiotique) ou à l'assemblage d'une protéine complexe constituée de plusieurs sous-unités identiques ou différentes. La présente invention a donc pour objet une méthode d'analyse in vitro d'un phénotype connu à partir d'un échantillon d'acides nucléiques, caractérisée en ce qu'elle comprend les étapes suivantes: a) la préparation, à partir de l'échantillon d'acide nucléique, d'au moins une molécule d'acide nucléique comprenant le ou les gènes codant pour la ou les protéines correspondant au phénotype analysé, éventuellement présent(s) dans les acides nucléiques de l'échantillon, et les éléments de contrôle nécessaires à la transcription et la traduction du ou desdits gènes, b) la transcription et la traduction in vitro de la ou des molécules d'acide nucléique préparée(s) à l'étape (a), éventuellement en présence d'une ou plusieurs molécules rapporteur permettant de révéler l'activité, la présence ou l'absence de la ou des protéines correspondant au phénotype analysé, c) la mise en contact des protéines éventuellement produites à l'étape (b) avec une ou plusieurs molécules rapporteur, si celle(s)-ci n'étai(en)t pas présente(nt) à l'étape (b), permettant de révéler l'activité, la présence ou l'absence de la ou des protéines correspondant au phénotype analysé. Les séquences de contrôles du ou des gènes codant pour la ou les protéines correspondant au phénotype analysé selon le procédé de l'invention sont pour la transcription: - un promoteur d'ARN polymérase en 5', éventuellement un terminateur d'ARN polymérase en 3', et pour la traduction: - un site de fixation des ribosomes, aussi désigné ci-après RBS pour "Ribosome Binding Site", qui peut être ou non le(s) site(s) RBS naturel(s) du ou des gènes. Le promoteur (en 5') et le terminateur (en 3') s'il est présent, d'une ARN polymérase, sont par exemple ceux du phage T7. Comme indiqué précédemment le phénotype analysé peut correspondre à une seule protéine ou à plusieurs protéines, par exemple dans le cas d'un phénotype exprimé par un opéron. En conséquence, la méthode de l'invention accepte plusieurs formes de réalisation. Lorsque le phénotype analysé correspond à une seule protéine, la méthode de l'invention comprend les étapes suivantes: a) la préparation, à partir de l'échantillon d'acide nucléique, d'une molécule d'acide nucléique comprenant le gène codant pour la protéine correspondant au phénotype analysé, si il est présent dans les acides nucléiques de l'échantillon, en 5' dudit gène un promoteur d'ARN polymérase et un site RBS, et éventuellement un terminateur d'ARN polymérase en 3' dudit gène, b) la transcription et la traduction in vitro de la molécule d'acide nucléique préparée à l'étape (a), éventuellement en présence d'une ou plusieurs substances rapporteurs permettant de révéler l'activité, la présence ou l'absence de la protéine correspondant au phénotype analysé, c) la mise en contact des protéines éventuellement produites à l'étape (b) avec une ou plusieurs molécules rapporteurs, si celle(s)-ci n'étai(en)t pas présente(nt) à l'étape (b), permettant de révéler l'activité, la présence ou l'absence de la protéine correspondant au phénotype analysé. Mais le procédé de l'invention peut aussi être appliqué à l'analyse d'un phénotype correspondant à un ensemble de protéines. Les gènes codant pour ces protéines peuvent être situés sur le même fragment d'ADN comme dans le cas d'un opéron, ou à différents endroits de l'ADN génomique comme dans le cas de certaines voies métaboliques. Lorsque le phénotype analysé correspond à plusieurs protéines, l'étape (a) de la méthode de l'invention admet les deux formes de mise en oeuvre suivantes: i) Soit, lesdits gènes sont regroupés sous la forme d'un opéron, et alors l'étape (a) consiste à préparer à partir de l'échantillon d'acides nucléiques, une molécule d'acide nucléique comprenant les gènes (l'opéron) codant pour les protéines correspondant au phénotype analysé, si ils sont présents dans les acides nucléiques de l'échantillon, en 5' de l'ensemble desdits gènes (de l'opéron) un promoteur d'ARN polymérase, éventuellement en 3' de l'ensemble desdits gènes (de l'opéron) un terminateur d'ARN polymérase, et pour chacun desdits gènes son site RBS naturel. ii) Soit, lesdits gènes sont séparés et alors l'étape (a) consiste à préparer, à partir de l'échantillon d'acide nucléique, une ou plusieurs molécules d'acide nucléique comprenant les gènes codant pour les protéines correspondant au phénotype analysé, si ils sont présents dans les acides nucléiques de l'échantillon, en 5' de chacun desdits gène un promoteur d'ARN polymérase et un site RBS, et éventuellement en 3' de chacun desdits gènes un terminateur d'ARN polymérase. Dans la première forme de mise en oeuvre (i) ci- dessus, le site RBS de chacun des gènes est son site. RBS naturel, et l'on préfère alors utiliser à l'étape (b) un extrait de traduction préparé à partir de l'organisme dont provient l'échantillon d'acides nucléiques ou d'un organisme phylogénétiquement proche. Dans la seconde forme de mise en oeuvre (ii) ci- dessus, le site RBS peut être le site naturel de chacun des gènes ou un autre site RBS plus adapté à l'étape (b) de traduction. Une variante de la première (i) et deuxième forme (ii) de mise en oeuvre ci-dessus, consiste à réaliser en parallèle ou simultanément, la méthode de l'invention décrite précédemment lorsque le phénotype analysé correspond à une seule protéine, chaque étape (a) étant réalisée avec chacun des gènes. Une alternative à la réalisation en parallèle ou simultanée des méthodes de l'invention, -kE - consiste à réaliser séparément pour chacun des gènes les étapes (a) et (b), puis, pour l'analyse finale du phénotype impliquant chacune des protéines, à rassembler les produits des étapes (b) pour réaliser l'étape (c). De même, lorsque le phénotype analysé correspond à des protéines dont les gènes sont physiquement séparés sur le gènome de l'organisme dont le phénotype est analysé, la méthode de l'invention consiste à réaliser en parallèle ou simultanément, la méthode décrite précédemment lorsque le phénotype analysé correspond à une seule protéine, chaque étape (a) étant réalisée avec chacun des gènes. Une alternative à la réalisation en parallèle ou simultanée des méthodes de l'invention, consiste à réaliser séparément pour chacun des gènes, les étapes (a) et (b), puis, pour l'analyse finale du phénotype impliquant chacune des protéines, à rassembler les produits des étapes (b) pour réaliser l'étape (c). Une forme de mise en oeuvre avantageuse de l'étape (a) de la méthode de l'invention consiste à préparer la ou les molécules d'acide nucléique par une réaction d'amplification du ou des gènes codant pour la ou les protéines correspondant au phénotype analysé, à partir de l'échantillon d'acides nucléiques, à l'aide d'une ou plusieurs paires d'amorces, chacune constituée de: - l'amorce sens comprenant la séquence s'hybridant en amont d'un ou plusieurs desdits gènes et portant un promoteur d'ARN polymérase et éventuellement un site RBS, et - l'amorce antisens comprenant la séquence s'hybridant en aval d'un ou plusieurs des mêmes desdits gènes et portant éventuellement un terminateur d'ARN polymérase. Mais la préparation de la molécule d'acide nucléique de l'étape (a) peut être réalisée par toute autre méthode connue de l'homme du Métier comme une coupure de restriction permettant de récupérer le ou les gènes d'intérêt suivie d'une ligation orientée avec les éléments de contrôle nécessaires à la transcription et à la traduction in vitro indiqués précédemment. La méthode de l'invention offre l'avantage de pouvoir détecter spécifiquement une ou plusieurs séquences cibles dans un échantillon à analyser et de travailler ultérieurement directement sur cette ou ces séquences cibles. La sensibilité de cette méthode s'explique par le coefficient multiplicateur des étapes (b) et (c) correspondant respectivement à la transcription, à la traduction du ou des gènes codant pour la ou les protéines correspondant au phénotype analysé puis à la détection de l'activité d'une ou plusieurs molécules rapporteur. La méthode de l'invention est en outre rapide et reproductible, car toutes les réactions sont réalisées in vitro, ce qui permet de standardiser la détection et de s'affranchir de tous les problèmes liés aux tests de diagnostic in vivo, comme la diffusion membranaire, la toxicité cellulaire, l'état physiologique des cellules. Il convient de remarquer que dans cette application de la méthode de l'invention, le phénotype recherché est mis en évidence grâce à l'activité de la protéine cible qui est exprimée in vitro. Dans ce cas, la méthode de l'invention permet non seulement de mettre en évidence la présence d'une ou plusieurs séquences cibles, mais aussi de caractériser l'activité de la ou des protéines correspondantes. Cette caractérisation, peut être aussi désignée phénotypage de la protéine ou des protéines cibles, par opposition à la génomique qui est la caractérisation de la composition en acides nucléiques de la séquence cible. Le diagnostic de séquences cibles correspond alors également au diagnostic de la protéine cible correspondante et à sa caractérisation fonctionnelle. On entend par exemple par caractérisation, la définition du spectre d'inhibition d'une protéine cible par des inhibiteurs spécifiques ou la définition d'une gamme de pH dans laquelle la protéine cible est active. A titre d'exemple, cette méthode présente un intérêt tout particulier dans le diagnostic de la protéine cible correspondant à la protéinase à acide aspartique du virus HIV pour étudier consécutivement sa sensibilité à différents inhibiteurs spécifiques de protéinases ou antiviraux, lorsque la séquence cible correspondante est présente dans un échantillon d'ADN. Conformément à la définition donnée précédemment, on entend par phénotype la manifestation d'une propriété observable correspondant à l'expression d'un ou plusieurs gènes. La méthode de l'invention permet donc d'analyser les différents phénotypes correspondant à l'expression de plusieurs mutants d'un même gène pouvant être contenus dans un même échantillon d'acides nucléiques de départ. A titre d'exemple de cette application de la méthode de l'invention, on peut citer les différents mutants du gène de la protéase du VIH contenus dans un échantillon d'un patient infecté par ce virus. La mise en oeuvre de la méthode de l'invention consiste alors à réaliser chaque étape (a) avec chacun des mutants dudit gène de façon à exprimer chacun de ceux-ci séparément. La séparation des mutants contenus dans l'échantillon peut être réalisée par clonage, dilution extrême, ou par toute autre méthode connue de l'homme du Métier. Cette application de la méthode de l'invention consiste donc à analyser les différentes formes d'un phénotype connu exprimé par un seul échantillon d'acides nucléiques. On entend par différentes formes d'un phénotype connu, la manifestation de propriétés comparables, car tous les variants de la protéase du VIH ont une activité protéasique, mais distinguables les unes des autres, puisque chaque variant protéique de la protéase du VIH peut présenter une résistance spécifique à un antiprotéase. L'invention se rapporte donc aussi à l'application de la méthode à l'analyse in vitro des différentes formes d'un phénotype connu dans un échantillon d'acides nucléiques susceptibles de contenir le ou les gènes codant pour la ou les protéines correspondant à ces différents formes de phénotypes. En effet, comme indiqué ci- dessus sur la protéase du VIH, l'échantillon d'un patient infecté par ce virus peut contenir plusieurs variants du virus chacun exprimant une protéase différente. Il estdonc mug - intéressant d'effectuer non seulement un diagnostic de la présence du virus par l'intermédiaire de la recherche du phénotype de la protéase du virus conformément à la méthode de l'invention, mais aussi de réaliser une analyse de la représentation des différents variants de cette protéase. Sur la base de cet exemple sur le VIH, l'invention permet l'analyse in vitro des différentes formes d'un phénotype connu correspondant à l'expression de plusieurs variants d'un gène pouvant être contenus dans un même échantillon d'acides nucléiques de départ. Ce but est atteint selon l'invention, en amplifiant éventuellement les différents variants, par exemple par culture cellulaire ou par amplification moléculaire, puis en isolant chaque gène, par exemple par clonage ou par dilution extrême, et en exprimant chacun de ces gènes conformément aux étapes (a) et (b) de la méthode de l'invention, et enfin en révélant l'activité, la présence ou l'absence de chacune des protéines correspondant aux différents phénotypes analysés avec une molécule rapporteur. Le matériel biologique à partir duquel est obtenu l'échantillon d'acides nucléiques sur lequel est réalisée la méthode de l'invention peut être un prélèvement sanguin ou de tissu ou encore des matières premières utilisées en agroalimentaire, ou tout autre matière ou substance contenant des acides nucléiques susceptibles de comprendre le ou les gènes correspondant au phénotype analysé. Il peut être d'origine procaryotique ou eucaryotique ou encore virale. Il peut correspondre par exemple à un extrait d'ADN génomique, mitochondrial, ou aux produits d'une étape de réverse transcription préalable. La méthode de l'invention est remarquable en ce que la séquence cible constituée par le(s) gène(s) codant pour la ou les protéines correspondant au phénotype analysé est placée sous le contrôle d'un promoteur (en 5') et éventuellement d'un terminateur (en 3') d'une ARN polymérase, comme par exemple celle du phage T7, pour être transcrite in vitro à l'étape (b). De même, pour que la mE - traduction puisse se faire in vitro à l'étape (b), un site de fixation des ribosomes, aussi désigné ci-après RBS pour ribosome binding site, est introduit. Comme indiquée précédement, cette construction est avantageusement réalisée grâce à une réaction d'amplification à l'étape (a), par exemple du type PCR, dans laquelle l'amorce venant s'hybrider en amont d'une séquence cible (amorce sens) porte un promoteur d'ARN polymérase et un site RBS. L'amorce venant s'hybrider en aval d'une séquence cible (amorce antisens) porte un terminateur d'ARN polymérase. Ces amorces sens et antisens sont choisies de manière à amplifier spécifiquement le gène cible, comme représenté dans la figure 1 en annexe. Plusieurs formes de mise en oeuvre de la méthode de l'invention peuvent être réalisées selon la nature du phénotype analysé. En effet, lorsque la séquence cible correspond à un gène, celui-ci peut coder pour une protéine dont l'activité est directement ou indirectement identifiable in vitro. L'invention s'applique tout particulièrement à l'analyse d'un phénotype correspondant à une activité enzymatique, comme une reverse transcriptase, une protéase, une intéine, etc.... On peut citer par exemple le diagnostic d'activité bêta- lactamase impliquée dans la résistance aux antibiotiques. La séquence cible est préparée comme indiqué précédemment à l'étape (a) et l'activité enzymatique de la protéine correspondante est directement évaluée grâce à un test à la nitrocéphine. En conséquence, la molécule rapporteur, si elle est présente, peut être tout substance capable de révéler directement ou indirectement l'activité, la présence ou l'absence de la protéine ou des protéines correspondant au phénotype analysé, comme une molécule d'acide nucléique, une protéine, un peptide, tel qu'un anticorps ou un mélange d'anticorps spécifique d'une protéine et capable de révéler son activité, ou un substrat ou une cascade de substrats, 1_w - il dont l'un est celui de l'enzyme correspondant au phénotype analysé. Ainsi, à l'étape (c), la mise en contact de la molécule rapporteur avec les protéines éventuellement exprimées à l'étape (b) peut être réalisée par addition de la molécule rapporteur dans le mélange réactionnel résultant de l'étape (b). Mais la molécule rapporteur peut aussi être présente dans le mélange réactionnel dès l'une des étapes (a) ou (b), soit sous sa forme finale de molécule rapporteur, soit, selon une forme particulière de réalisation de l'invention, sous la forme d'une molécule d'acide nucléique (ADN, ou ARN) correspondant au gène codant pour ladite molécule rapporteur, et alors désigné ci-après gène rapporteur. Dans ce mode de réalisation particulier, la molécule rapporteur sera produite lors de l'étape (b) conjointement avec la ou les protéines correspondant au phénotype analysé. Dans cette forme particulière de mise en oeuvre de la méthode de l'invention, le gène rapporteur est placé sous les mêmes séquences de contrôle de régulation de la transcription et de la traduction que le gène ou les gènes codant pour la ou les protéines correspondant au phénotype analysé de façon à être coexprimé avec ceux- ci et ainsi permettre à la molécule rapporteur d'être présente lors de l'étape (c). Le gène rapporteur avec ses séquences de régulation de la transcription et de la traduction est présent sous toute forme d'acide nucléique comme un vecteur d'expression in vitro. A titre d'exemple, le gène rapporteur peut être le gène de la protéine GFP (Green Fluorescent Protein) ou celui de la beta-lactamase (TEM-1). Dans le cas de la GFP, l'étape (c) comprend la détection et éventuellement la quantification de l'émission de fluorescence. Ainsi, la méthode de l'invention permet par exemple de réaliser un test tel que la GFP n'est fluorescente que si la séquence cible est absente de l'échantillon d'acide nucléique étudié. Dans le cas de la beta-lactamase, l'étape (c) comprend la mesure de l'activité de cette enzyme, en incubant une fraction de la réaction de traduction dans un tampon contenant de la nitrocéphine. La nitrocéphine est une beta-lactamine chromogénique qui a la propriété de virer du jaune au rouge lorsqu'elle est hydrolysée par une beta- lactamase active. Un test rouge indique par exemple que la séquence cible est présente dans l'échantillon d'acide nucléique analysé. Tout autre gène rapporteur peut être envisagé dans le cadre de la méthode de l'invention, comme par exemple ceux de la beta- galactosidase, la luciférase, la peroxydase ou une microperoxydase. Il convient de noter que le gène rapporteur de la GFP présente l'avantage de produire une protéine, dont l'activité est instantanément mesurable, ce qui permet un gain de temps supplémentaire. Mais un gène rapporteur correspondant à une protéine ayant une activité enzymatique, du type de la bêta-lactamase présente une grande sensibilité dûe au coefficient enzymatique multiplicateur. La méthode de l'invention offre donc un grand choix de mode de réalisation à partir de gènes et molécules rapporteurs choisis en fonction de la nature et de l'activité de la ou des protéines correspondant au phénotype analysé. La transcription et la traduction de l'étape (b) de la méthode de l'irvention peuvent être aussi désignées conjointement réaction d'expression protéique in vitro, encore appelée EPIV. La réaction EPIV peut être décomposée en deux étapes distinctes ou simultanées. Dans ce dernier cas, les réactions de transcription et de traduction sont réalisées simultanément. Par contre la décomposition des étapes permet d'optimiser plus facilement les rendements de chaque étape, et ainsi de produire des quantités plus importantes de protéines, ce qui trouve toute son utilité dans le cas d'enzymes de faible activité spécifique. Le découplage entre la transcription et la traduction permet également d'éviter les problèmes de dégradation de la matrice d'ADN par les nucléases si celle- ci a été préparée par PCR. En effet, les composants de la réaction de transcription sont moins contaminés par des nucléases, contrairement aux extraits de traduction. Le découplage permet en outre l'emploi d'extraits cellulaires de traduction différents selon l'origine de l'échantillon d'acide nucléique étudié. En effet, la phase de traduction des transcrits de l'étape (b) est avantageusement réalisée avec un extrait cellulaire de la même origine ou d'une origine proche de celle de l'échantillon d'acide nucléique. On peut citer à titre d'exemple l'utilisation d'un extrait de traduction préparé à partir de cellules eucaryotes pour la traduction d'une séquence cible eucaryotique ou d'un extrait de traduction préparées à partir de mycobactéries non pathogènes pour la traduction de gènes de Mycobactéries pathogènes tel que l'intéine de RecA de Mycobacterium tuberculosis. Dans un autre cas de figure, l'extrait de traduction est préparé à partir d'organismes extrêmophiles pour la traduction d'un gène d'un même organisme ou d'un autre organisme extrêmophile du même type (thermophiles, halophiles, acidophiles, etc...). Ces extraits spécifiques permettent d'améliorer l'efficacité de traduction. Mais celle-ci peut aussi être réalisée avec un extrait universel comme par exemple un extrait d'E. coli. Il est également possible d'ajouter à l'extrait de traduction de l'étape (b) une ou plusieurs substances favorisant un repliement plus efficace des protéines exprimées, comme par exemple des chaperons, des détergents, des extraits membranaires, etc.... Dans le cas o la séquence cible est de type eucaryote, la réaction de transcription de l'étape (b) peut être complétée par une réaction de splicing et de maturation in vitro des ARNm en ajoutant un extrait nucléaire au mélange réactionnel. Avantageusement, la réaction EPIV de l'étape (b) est standardisée de façon à éviter des résultats correspondant à des faux positifs ou à des faux négatifs: MaE - d'une part, pour que la protéine cible ait le temps d'agir sur le rapporteur pour l'inhiber par exemple, ou pour éviter de se placer dans des conditions o le rapporteur serait en plus grande quantité que la protéine cible. - d'autre part, pour se placer dans des conditions d'activité à la fois pour la protéine cible et le rapporteur. La mesure de l'activité d'une ou plusieurs protéines à l'étape (c) peut être lue directement dans un lecteur de fluorimétrie si le rapporteur est par exemple la GFP ou de colorimétrie si le rapporteur est par exemple la beta-lactamase. Les lectures sont adaptées à la révélation du rapporteur. Il est tout a fait envisageable de réaliser une lecture en continue de l'activité du rapporteur, si ce dernier s'y prête. La méthode de l'invention peut être appliquée notamment à la détection d'agents infectieux, d'une anomalie cellulaire, d'une activité enzymatique. L'invention concerne aussi un kit pour la mise en oeuvre de la méthode décrite précédemment. Dans une première forme de réalisation un kit selon l'invention comprend: la molécule rapporteur, une ARN polymérase, des séquences nucléotidiques pour la préparation d'au moins une molécule d'acide nucléique comprenant le ou les gènes codant pour la ou les protéines correspondant au phénotypeanalysé, les quatre nucléotides triphosphates, les mélanges nécessaires à ladite préparation, à la transcription et à la traduction, un extrait cellulaire de traduction, au moins un composé capable de révéler l'activité de la molécule rapporteur, les mélanges de transcription et de traduction, et de révélation de l'activité de la molécule rapporteur, des témoins. Dans une seconde forme de réalisation un kit selon l'invention comprend: éventuellement les produits nécessaires à la préparation d'au moins une molécule d'acide nucléique comprenant le ou les gènes codant pour la ou les protéines correspondant au phénotype analysé, - une plaque de microtitration congelée contenant: la molécule rapporteur, une ARN polymérase, les quatre nucléotides triphosphates, un extrait cellulaire de traduction, au moins un composé capable de révéler l'activité de la molécule rapporteur, les mélanges de transcription et de traduction, et de révélation de l'activité de la molécule rapporteur, des témoins. La méthode de l'invention peut être avantageusement automatisée si le nombre d'échantillons à analyser est élevé. Les échantillons d'acides nucléiques sont alors placés sur un support pouvant correspondre par exemple à une plaque de microtitration de 96 ou 384 puits. Ces plaques chargées sont placées sur un automate pour: - la préparation des séquences cibles (étape a), - l'initiation des réactions de transcription et de traduction (étape b) et pour la révélation de la molécule rapporteur (étape c). En conséquence, l'invention concerne un dispositif comprenant un agencement d'un ou plusieurs supports, de robots et d'un lecteur desdits supports pour la réalisation des étapes de la méthode décrite précédemment. Comme indiqué précédemment, il est aussi possible de combiner dans un seul tube deux analyses ou plus selon la méthode de l'invention. L'étape (a) est réalisée alors avec les amorces nécessaires à l'amplification spécifique des deux gènes cibles. Dans ce cas, deux molécules rapporteurs différentes sont utilisées pour révéler chacune des deux protéines cibles. Il est encore possible d'utiliser la même molécule rapporteur pour les deux protéines cibles, et un résultat positif indique alors uniquement la présence de l'une ou de l'autre des protéines cibles. Il est aussi possible d'utiliser autant de molécules rapporteur que de protéines cibles, chaque rapporteur M- différent permettant de révéler chacune des protéines cibles. D'autres avantages et caractéristiques de l'invention apparaîtront dans les exemples de réalisation de l'invention, qui suivent et qui se réfèrent aux dessins en annexe dans lesquels: - La figure 1 est une représentation schématique de la méthode de l'invention. - La figure 2 est une représentation schématique de l'application de la méthode de l'invention au diagnostic du virus HIV. - La figure 3 est une représentation schématique de l'application de l'invention au diagnostic de Mycobacterium tuberculosis. Exemple 1: Diagnostic du virus HIV. Plus de 10 ans après le début de l'épidémie du Sida, une course s'est engagée entre la maladie qui progresse sans fin et les virologues. La pandémie du Sida n'épargne plus aucun pays. Son expansion semble relativement limitée dans les pays occidentaux, bien que le nombre de personnes infectées ne soit pas connu avec précision. En revanche, elle touche gravement les pays en développement. Quelque soit le mode de contamination, le virus s'installe rapidement dans le tissu lymphoïde chargé d'assurer la défense de l'organisme contre les agents infectieux. Parmi les protéines virales nécessaires au cycle de multiplication du virus du HIV, on peut noter la protéinase à acide aspartique. La présence de cette protéine peut servir à diagnostiquer l'infection d'un patient par le rétrovirus. Comme montré à la figure 2, après une extraction des acides nucléiques d'un prélèvement sanguin, une étape d'amplification permet d'amplifier le gène de la protéinase à acide aspartique de HIV si le patient est infecté par le virus et d'intégrer le promoteur, le terminateur de la T7 ARN polymérase et un site RBS à la séquence cible. La molécule rapporteur préparée à l'étape (a) est un peptide contenant des sites de coupure spécifiques de la protéinase de HIV. Ce peptide est lié covalemment respectivement en N et C terminal à une molécule fluorescente (comme par exemple la fluoresceine) et à un quencher de cette dernière (comme par exemple la rhodamine). Le gène cible amplifié est placé dans un tube chargé avec un mélange de réaction EPIV couplé (composants nécessaires à la transcription et à la traduction). Puis on ajoute la molécule rapporteur. Avantageusement, le milieu réactionnel EPIV est composé soit d'un extrait cellulaire de traduction de E. coli, soit d'un extrait cellulaire de traduction de cellules eucaryotes. Si la protéinase à acide aspartique est absente de l'échantillon testé, le rapporteur n'est pas clivé. La fluoresceine et la rhodamine se trouvent alors dans un environnement suffisamment proche pour assurer un transfert d'énergie de type FRET (fluorescence resonance energy of transfert). Après exposition du peptide rapporteur à une longueur d'onde donnée (environ 490 nm), seule la fluorescence rouge du quencher sera détectable. Si la protéinase à acide aspartique est présente dans l'échantillon testé, le rapporteur est clivé. La fluoresceïne et la rhodamine sont alors trop éloignés pour assurer un transfert d'énergie. Après exposition des produits de clivage à une longueur d'onde donnée (environ 490 nm), seule la fluorescence verte de la fluoresceïne est détectable. Des témoins négatif et positif sont réalisés en parallèle. Il correspondent respectivement à une fraction d'une réaction PCR réalisée sur de l'ADN d'un patient sain et d'un patient infecté. Après avoir diagnostiqué la présence du virus chez un patient, cette méthode permet un test consécutif de caractérisation de la protéinase à acide aspartique: selon la souche responsable de l'infection virale, la protéinase à acide aspartique présente une sensibilité variable à i_ différents inhibiteurs spécifiques. Un tel phénotypage de la protéinase à acide aspartique permettra d'adapter la thérapie du patient directement après le diagnostic de l'infection virale. Pour cela, il suffit d'incuber une fraction de la réaction d'amplification dans différentes réactions EPIV, chacune contenant un inhibiteur spécifique de protéinase à acide aspartique utilisé actuellement dans des thérapies antivirales, et d'effectuer ensuite le test d'activité de la protéinase à acide aspartique avec le peptide FRET. Exemple II: Diaqnostic de Mvcobacterium tuberculosis. Mycobacterium tuberculosis est un parasite strict de l'homme mais capable d'infecter quelques espèces animales vivant à ses côtés. C'est l'agent responsable de la tuberculose humaine. L'infection, principalement par voie aérienne, se manifeste le plus souvent par une infection pulmonaire. Si cette maladie ne compte plus parmi les problèmes de santé publique majeurs au niveau européen, elle reste néanmoins celle des infections qui entraîne le plus de décès. L'augmentation globale de l'incidence de la tuberculose dans les années à venir est inéluctable parce que la population des pays en voie de développement est jeune et qu'un grand nombre d'enfant a déjà été infecté ou le sera avant d'atteindre l'âge adulte. De plus cette maladie va poser un problème de santé publique à terme, car elle fait partie des infections secondaires développées par les malades atteints du Sida. Les méthodes classiques de diagnostic de la tuberculose et des infections mycobactériennes reposent sur l'examen microscopique et sur la culture des échantillons. Pour palier à la lenteur du diagnostic classique, de nouvelles techniques ont été développées. Dans le cadre de la méthode de l'invention, le diagnostic du pathogène est réalisé en utilisant par exemple comme cible une de ses intéines. Les intéines sont des introns protéiques récemment découverts à l'intérieur de ! EX séquences protéiques. Les intéines possèdent toute l'information nécessaire à leur propre excision. Ce processus récemment mis en évidence est comparable à l'épissage des ARN prémessagers. Ainsi, par convention, la séquence protéique interne est appelée intéine et les deux séquences externes, extéines (Perler, F.B., Davis E.O., Dean, G.E., Gimble, F.S., Jack, W.E., Neff, N., Noren, C.J., Thorner, J. et Belfort, M. (1994). Protein splicing elements : inteins and exteins - a definition of terms and recommended nomenclature. Nucl. Acids Research 22, 1125- 1127). Ce phénomène d'excision protéique spécifique est très rapide. Ces intéines ont été découvertes dans des groupes de gènes très différents et elles sont à la fois présentes chez les procaryotes et les eucaryotes. La protéine RecA de Mycobacterium tuberculosis contient un tel élément. D'autres Mycobactéries pathogènes peuvent posséder de telle séquence dans RecA comme Mycobacterium Leprae. Néanmoins, ces deux introns protéiques sont différents en taille, en séquence et dans leur localisation, ce qui les rend très spécifiques (Davis, E.O., Thangaraj, H.S., Brooks, P.C. et Colston, M.J. (1994). Evidence of selection for protein introns in the recAs of pathogenic mycobacteria. EMBO J. 13 (4), 699-703). En outre, ces intéines peuvent posséder une activité endonucléase, capable de reconnaître spécifiquement un mégasite. Le test montré à la figure 3 est le suivant. Après extraction de l'ADN de l'échantillon à analyser, une PCR permet d'amplifier le gène cible codant pour l'intéine en lui intégrant le promoteur, le terminateur de la T7 ARN polymérase et un site RBS. Le produit de PCR est ensuite incubé dans un mélange de réaction EPIV. Le rapporteur est ensuite ajoutée. Ce rapporteur correspond à une séquence polynucléotidique caractérisé par la présence en 5' et en 3' respectivement d'une molécule de fluoresceine et de Rhodamine liées de façon covalente à l'ADN et en son centre du site de coupure spécifique de l'intéine de RecA de Mycobacterium tuberculosis. Lorsque l'échantillon est contaminé par Mycobacterium tuberculosis, l'intéine produite dans la Mu- réaction EPIV, clive le rapporteur et empêche un transfert d'énergie de type FRET (décrit dans l'exemple précédent). Après exposition de la réaction EPIV à environ 490 nm, une coloration verte de l'échantillon est observée. En absence de contamination, le rapporteur n'est pas clivé et après exposition de la réaction EPIV à environ 490 nm, une coloration rouge de l'échantillon est observée. Un témoin négatif est constitué d'une fraction de réaction PCR réalisée sur de l'ADN ne contenant aucun pathogène. Un témoin positif est constitué d'un fraction de réaction PCR réalisées sur de l'ADN d'un échantillon contaminé par le pathogène recherché. REVENDICATIONS 1) Méthode d'analyse in vitro d'un phénotype connu à partir d'un échantillon d'acides nucléiques, caractérisée en ce qu'elle comprend les étapes suivantes: a) la préparation, à partir de l'échantillon d'acide nucléique, d'au moins une molécule d'acide nucléique comprenant le ou les gènes codant pour la ou les protéines correspondant au phénotype analysé, éventuellement présent(s) dans les acides nucléiques de l'échantillon, et les éléments de contrôle nécessaires à la transcription et la traduction du ou desdits gènes, b) la transcription et la traduction in vitro de la ou des molécules d'acide nucléique préparée(s) à l'étape (a), éventuellement en présence d'une ou plusieurs molécules rapporteur permettant de révéler l'activité, la présence ou l'absence de la ou des protéines correspondant au phénotype analysé, c) la mise en contact des protéines éventuellement produites à l'étape (b) avec une ou plusieurs molécules rapporteur, si celle(s)-ci n'étai(en)t pas présente(nt) à l'étape (b), permettant de révéler l'activité, la présence ou l'absence de la ou des protéines correspondant au phénotype analysé. 2) Méthode d'analyse selon la revendication 1, caractérisée en ce que les séquences de contrôle du ou des gènes codant pour la ou les protéines correspondant au phénotype analysé sont pour la transcription: - un promoteur d'ARN polymérase en 5', - éventuellement un terminateur d'ARN polymérase en 3', et pour la traduction: - un site de fixation des ribosomes. 3) Méthode d'analyse selon la revendication 2, caractérisée en ce que le promoteur (en 5') et le terminateur (en 3') s'il est présent, d'une ARN polymérase, sont ceux du phage T7. -Mau 4) Méthode d'analyse selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce qu'elle comprend les étapes suivantes: a) la préparation, à partir de l'échantillon d'acide nucléique, d'une molécule d'acide nucléique comprenant le gène codant pour la protéine correspondant au phénotype analysé, si il est présent dans les acides nucléiques de l'échantillon, en 5' dudit gène un promoteur d'ARN polymérase et un site RBS, et éventuellement un terminateur d'ARN polymérase en 3' dudit gène, b) la transcription et la traduction in vitro de la molécule d'acide nucléique préparée à l'étape (a), éventuellement en présence d'une ou plusieurs substances rapporteurs permettant de révéler l'activité, la présence ou l'absence de la protéine correspondant au phénotype analysé, c) la mise en contact des protéines éventuellement produites à l'étape (b) avec une ou plusieurs molécules rapporteur, si celle(s)-ci n'étai(en)t pas présente(nt) à l'étape (b), permettant de révéler l'activité, la présence ou l'absence de la protéine correspondant au phénotype analyse. ) Méthode d'analyse selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisée en ce que les gènes codant pour les protéines correspondant au phénotype analysé sont situés sur le même fragment d'ADN comme dans le cas d'un opéron, ou à différents endroits de l'ADN génomique. 6) Méthode d'analyse selon la revendication 5, -3 caractérisée en ce que en ce que l'étape (a) consiste à préparer, à partir de l'échantillon d'acide nucléique, une molécule d'acide nucléique comprenant les gènes codant pour les protéines correspondant au phénotype analysé, si ils sont présents dans les acides nucléiques de l'échantillon, en 5' de l'ensemble desdits gène un promoteur d'ARN polymérase, éventuellement en 3' de l'ensemble desdits gènes un terminateur d'ARN polymérase, et pour chacun desdits gènes son site RBS naturel. 7)) Méthode d'analyse selon la revendication 5, caractérisée en ce que en ce que l'étape (a) consiste à préparer, à partir de l'échantillon d'acide nucléique, une ou plusieurs molécules d'acide nucléique comprenant les gènes codant pour les protéines correspondant au phénotype analysé, si ils sont presents dans les acides nucléiques de l'échantillon, en 5' de chacun desdits gène un promoteur d'ARN polymérase et un site RBS, et éventuellement en 3' de chacun desdits gènes un terminateur d'ARN polymérase. 8) Méthode d'analyse selon l'une des revendications 5 à 7, caractérisée en ce l'on réalise en parallèle ou simultanément, une étape (a) selon la revendication 4 avec chacun des gènes. 9) Méthode d'analyse selon la revendication 8, caractérisée en ce que l'on réalise séparément pour chacun des gènes, les étapes (a) et (b), puis, en ce que l'on rassemble les produits des étapes (b) pour réaliser l'étape (c). ) Méthode d'analyse selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce que à l'étape (a) on prépare la ou les molécules d'acide nucléique par une réaction d'amplification du ou des gènes codant pour la ou les protéines correspondant au phénotype analysé, à partir de l'échantillon d'acides nucléiques, à l'aide d'une ou plusieurs paires d'amorces, chacune constituée de: - l'amorce sens comprenant la séquence s'hybridant en amont d'un ou plusieurs desdits gènes et portant un promoteur d'ARN polymérase et éventuellement un site RBS, et - l'amorce antisens comprenant la séquence s'hybridant en aval d'un ou plusieurs des mêmes desdits gènes et portant éventuellement un terminateur d'ARN polymérase. 11) Méthode d'analyse selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce que le phénotype correspond à l'expression de plusieurs mutants d'un seul gène et en ce que l'on réalise une étape (a) avec chacun desdits gènes mutants. 12) Méthode d'analyse selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce que la molécule rapporteur, si elle est présente, est une substance capable de révéler directement ou indirectement l'activité, la présence ou l'absence de la protéine ou des protéines correspondant au phénotype analysé. 13) Méthode d'analyse selon la revendication 12, caractérisée en ce que la molécule rapporteur est choisie parmi: une molécule d'acide nucléique, une protéine, un peptide, tel qu'un anticorps ou un mélange d'anticorps spécifique d'une protéine et capable de révéler son activité, ou un substrat ou une cascade de substrats, dont l'un est celui de l'enzyme correspondant au phénotype analysé. 14) Méthode d'analyse selon l'une des revendications 12 ou 13, caractérisée en ce que la molécule rapporteur est une protéine qui est produite lors de l'étape (b) conjointement avec la ou les protéines correspondant au phénotype analysé. ) Méthode selon la revendication 14, caractérisée en ce que le gène codant pour la molécule rapporteur est placé sous le contrôle de séquences de régulation de la transcription et de la traduction similaires à celles du ou des gènes codant pour la ou les protéines correspondant au phénotype analysé, de façon à ce que le gène rapporteur soit coexprimé avec le ou les gènes codant pour la ou lesdites protéines. 16) Un kit pour la mise en oeuvre d'une méthode selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce qu'il comprend: la molécule rapporteur, une ARN polymérase, des séquences nucléotidi-ques pour la préparation d'au moins une molécule d'acide nucléique comprenant le ou les gènes codant pour la ou les protéines correspondant au phénotype analysé, les quatre nucléotides triphosphates, les mélanges nécessaires à ladite préparation, à la transcription et à la traduction, un extrait cellulaire de traduction, au moins un composé capable de révéler l'activité de la molécule rapporteur, les mélanges de transcription et de traduction, et de révélation de l'activité de la molécule rapporteur, des témoins. 17) Un kit pour la mise en oeuvre d'une méthode selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce qu'il comprend: - éventuellement les produits nécessaires à la préparation d'au moins une molécule d'acide nucléique comprenant le ou les gènes codant pour la ou les protéines correspondant au phénotype analysé, - une plaque de microtitration congelée contenant: la molécule rapporteur, une ARN polymérase, les quatre nucléotides triphosphates, un extrait cellulaire de traduction, au moins un composé capable de révéler l'activité de la molécule rapporteur, les mélanges de transcription et de traduction, et de révélation de l'activité de la molécule rapporteur, des témoins. 18) Un dispositif comprenant un agencement d'un ou plusieurs supports, de robots et d'un lecteur desdits supports pour la réalisation des étapes du procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 15.