Brevet FR2778923A1 — publié le 19991126

L'invention concerne l'utilisation d'un sérum riche en facteur Va pour la préparation de compositions utiles en tant que contrôles pathologiques ou calibrants dans des méthodes d'analyse de la résistance à la protéine C activée (PCa), ainsi que lesdites compositions, leur procédé de préparation et une méthode de détection de la résistance à la protéine C activée. L'étude des thrombophilies héréditaires a permis de démontrer que I0 la résistance à la PCa (plus communément dénommée selon l'abréviation anglaise APC-R) est principalement associée à une mutation sur le gène codant pour le facteur V. Cette mutation, dite "mutation de Leiden", "mutation R506Q", ou "mutation 506R"-506Q", se traduit, au niveau de la séquence des acides aminés du facteur V humain, par le remplacement en position 506 d'un résidu Arg en Gin, et prédispose à la thrombose le plus souvent veineuse (au niveau des membres inférieurs avec, le cas échéant, embolie pulmonaire). Une importante bibliographie existe aujourd'hui sur le sujet. On se référera notamment aux publications de Dahlback B. et al. (1993), Bertina R.M. et al. (1994), Kalafatis M. et al. (1994), De Ronde H. et al. (1994), Svensson P.J. et al. (1994) et Dahlback et al. (1994). D'autres anomalies du facteur V peuvent être à l'origine de APC-R. Il se pourrait en particulier qu'un clivage en position 306 (c'est-à- dire 306 Arg) de la séquence des acides aminés du facteur V et/ou Va (facteur V activé) soit l'une des autres causes possibles de l'APC-R. Les premières approches de l'APC-R ont été mises en oeuvre (notamment selon un test APTT, KCCT ou analogue) pour apprécier l'existence d'un facteur de risque thrombotique en comparant le temps de coagulation, en présence et en l'absence de PCa exogène, d'un plasma témoin avec celui d'un échantillon à tester. L'addition de PCa induit normalement un allongement du temps de coagulation. En effet, la PC sous sa forme activée forme un complexe avec la protéine S et procède ainsi notamment à la dégradation protéolytique du facteur Va. Ceci a pour effet de freiner l'activité thrombotique de la thrombine. De ce fait, la coagulation est retardée. En cas d'anomalie, cet allongement du temps de coagulation se trouve plus réduit que celui observé chez le témoin (Mitchell C.A.et al. (1987), Amer L. et al. (1990) et Dahlback B. et al (1991). Un kit de dosage est actuellement disponible sur le marché, commercialisé sous la dénomination de "COATEST APC-RESISTANCE" par la société CHROMOGENIX (I.L.). Ce kit met en oeuvre le procédé décrit dans la publication de DAHLBACK et al. (1991) précitée et illustré dans WO-A- 9310261 et l'article de DAHLBACK et al. (1993), pages 1004-1008, précité. Ce procédé comprend le mélange d'un volume de plasma à tester ou de plasma témoin avec un volume de réactif APTT (comprenant des phospholipides + un activateur de surface tel que la silice, le kaolin ou le verre), l'incubation pendant 4 minutes à 37 C, puis l'initiation de la coagulation au moyen d'un volume d'une solution de CaCI2, d'une part, ou d'un même volume d'une solution de CaC12 additionnée de PCa, d'autre part. Plusieurs perfectionnements ou alternatives de ce procédé ont été décrits, notamment dans WO-A-9615457, WO-A-9604560 et EP-A-0711838. Dans tous les procédés décrits, la réponse à la PCa est évaluée en comparant les temps de coagulation obtenus en présence et en l'absence de PCa exogène par des méthodes de coagulation classiques (APTT, PT ou RVVT- Xa). Généralement, les résultats sont exprimés sous forme de deux rapports le rapport standard ou APC-SR avec: APC - SR - Temps de coagulation en présence de PCa Temps de coagulation en 1' absence de PCa * le rapport normalisé ou nAPC-SR avec: nAPC-SR = APC - SR de l'échantillon APC - SR du plasma témoin Toutefois, les résultats obtenus peuvent varier considérablement selon les réactifs et les appareils de mesure utilisés et chaque laboratoire doit définir ses propres normes. De ce fait, les zones de normalité et les valeurs des seuils ("cut-off') présentent également une hétérogénéité. Il est donc important de pouvoir disposer de contrôles et/ou calibrants standardisés pour faciliter l'interprétation des résultats obtenus, en fonction des méthodes utilisées. Dans le cas des troubles de la coagulation liés à une résistance à la PCa, les contrôles pathologiques ou calibrants utilisés doivent donner des résultats similaires à ceux obtenus à partir du sang de sujets malades, c'est-à- dire des temps de coagulation en présence de PCa inférieurs à la normale. Toutefois, dans la mesure o cette diminution du temps de coagulation résulte d'une mutation du facteur V, et non d'une absence ou d'une non fonctionnalité de celui-ci, les procédés classiques de préparation de plasmas contrôles (tels que l'adsorption ou la dilution) à partir de plasmas normaux ne peuvent pas être appliqués pour fabriquer des plasmas reflétant cette anomalie. L'utilisation à une échelle industrielle de plasmas prélevés chez des malades n'étant évidemment pas concevable, il s'est donc avéré nécessaire de trouver des moyens de substitution. Une solution a été ainsi proposée dans EP 0711839 qui décrit des plasmas pouvant servir de calibrants dans des tests de coagulation évaluant l'activité du système protéine C/protéine S, ou l'APC-R. Ces plasmas sont obtenus en ajoutant à un plasma humain normal du plasma provenant d'animaux, en particulier du plasma citrate de chien ou préférentiellement de lapin. L'addition de ces plasmas d'animaux produit une diminution du temps de coagulation dans un test dépendant de la PCa proportionnelle à la quantité de plasma non humain ajouté, permettant ainsi de simuler un déficit dans les tests fonctionnels étudiant l'activité du facteur V et/ou du système protéine C/protéine S. EP-0711839 indique également que les plasmas peuvent être plus ou moins appropriés selon l'espèce animale étudiée, sans toutefois fournir une explication précise de cette observation. L'utilisation de plasmas d'animaux, telle que préconisée dans cette demande offre donc la possiblité d'obtenir facilement des témoins simplifiant l'évaluation de résultats obtenus à partir de tests différents. Toutefois, elle peut présenter certains inconvénients selon les conditions des tests de coagulation effectués. Ainsi, la simulation d'une APC-R nécessite l'addition d'au moins 5 % de plasma lorsqu'il s'agit du lapin, voire deux à trois fois plus dans le cas d'un autre animal. Cette addition au plasma humain normal peut créer un effet de dilution, susceptible d'interférer dans l'interprétation des résultats. D'autre part, les plasmas animaux utilisés contiennent des taux importants de facteurs II et VII, connus pour être des facteurs d'instabilité (LEWIS J.H., 1996). Des problèmes peuvent donc survenir lors de la conservation de ce type de réactif Par ailleurs, des problèmes d'approvisionnement peuvent également se poser pour les plasmas préconisés, liés par exemple aux difficultés de prélèvement et faible volume de sang de l'animal (cas du lapin par exemple). Les auteurs de la présente invention ont cherché à mettre au point des compositions représentatives d'un plasma contenant un facteur V Leiden et plus précisément un plasma ayant un temps de coagulation de PCa, situé dans l'intervalle défini pour un plasma APC-R. Le but de cette démarche est d'avoir à disposition des plasmas simulant le comportement de plasmas APC-R et s'en servir comme contrôles pathologiques quand le plasma à tester est un plasma APC-R ou fortement soupçonné de l'être. Deux approches sont théoriquement possibles pour la fabrication d'un tel plasma "APC-R like". La première consiste à induire une inhibition de la PCa à l'aide de composés spécifiques, créant ainsi une situation dans laquelle le facteur Va n'est plus inhibé. La seconde approche consiste à induire une saturation de la PCa c'est-àdire une situation dans laquelle le facteur Va se trouve présent dans des quantités telles que la PCa n'est capable d'en cliver qu'une partie. L'excès de facteur Va restant actif peut alors induire un temps de coagulation identique à celui d'un plasma APC-R Les auteurs de la présente invention ont adopté la seconde approche. Ceux-ci se sont donc efforcés de sélectionner une source de facteur Va non humaine qui puisse être ajoutée à un plasma normal de façon à simuler un plasma APC-R, sans que cela n'induise une trop grande dilution ou une instabilité de ce plasma, ni des interférences liées à l'apport concomitant d'autres tfacteurs. Les auteurs de la présente invention ont pu observer que l'addition de très faibles quantités de sérum animal, notamment de bovin, riche en facteur Va à du plasma humain normal induisait une diminution du temps de coagulation en présence de PCa. Ceux-ci ont ainsi obtenu des plasmas contrôles pathologiques en sélectionnant, à partir de gammes de dilution de sérum animal riche en facteur Va dans des plasmas humains normaux, les échantillons présentant un temps de coagulation situé dans l'intervalle de celui d'un plasma APC-R. Par ailleurs, la diminution du temps de coagulation du plasma étant fonction de la quantité de sérum ajoutée jusqu'à inhibition totale de la PCa (seuil correspondant au temps de coagulation minimum), les travaux des inventeurs permettent également de préparer des compositions utilisables en tant que calibrants pour ce type de tests. Outre les avantages énoncés ci-dessus (faible dilution du plasma, apport négligeable d'autres facteurs de la coagulation et de facteurs interférents dans les réactions), l'utilisation de sérums animaux riches en facteur Va présente un autre intérêt en matière de spécificité. Il a en effet été montré que le facteur V augmentait la dégradation protéolytique du facteur VIII par la PCa, même en l'absence de protéine S, alors que le facteur Va n'avait pas cette action de cofacteur (VARADI K. et al., 1995). Or le facteur V se présente sous sa forme activée dans le sérum, alors qu'il est sous sa forme non activée dans le plasma. L'addition d'un sérum présente donc, par rapport à celle d'un plasma, une plus grande spécificité pour l'action de la PCa sur le facteur Va et est ainsi particulièrement avantageuse pour des tests de détection du facteur V Leiden. La présente invention a donc pour objet l'utilisation d'un sérum animal riche en facteur Va pour la fabrication de compositions utiles en tant que contrôles pathologiques ou calibrants dans une méthode de détection d'une résistance à la protéine C activée. Elle vise également des compositions utiles en tant que contrôles pathologiques ou calibrants pour une méthode de détection d'une résistance à la PCa comprenant du sérum animal riche en facteur Va et du plasma normal. L'invention a en outre pour objet, un procédé de préparation de compositions utiles en tant que contrôles pathologiques ou calibrants dans une méthode de détection d'une résistance à la PCa comprenant du plasma normal enrichi en facteur Va non humain. Par "plasma normal", on entend un plasma normal ou un pool de plasmas normaux. L'invention comprend enfin une méthode de détection d'une résistance à la PCa et les kits pour leur mise en oeuvre comprenant, à tire de contrôle pathologique ou calibrant, une composition telle que définie cidessus. Selon un premier aspect, la présente invention a pour objet l'utilisation d'un sérum animal riche en facteur Va pour les applications visées ci- dessus. Le sérum peut provenir d'espèces animales différentes. Ainsi, dans le cadre de la présente invention, par "sérum animal", on entend un sérum animal ou un pool de sérums animaux d'espèces différentes ou non. Le sérum est préférentiellement d'origine bovine. En effet, par rapport au plasma humain considéré comme contenant % de facteur V, on mesure chez le bovin 500 % de ce facteur dans le plasma, et jusqu'à 2000 à 3500 % de facteur V sous sa forme activée (facteur Va) dans le sérum (ces quantités sont exprimées par rapport à une référence constituée par un pool de plasmas humains de donneurs sains, dans lequel le taux de facteur V est supposé être de 100 % ou 1 U/ml, Karges H.E. et al., (1994)). Un sérum fortement concentré en facteur Va peut ainsi être utilisé en des quantités beaucoup plus faibles que celles nécessaires pour les plasmas, ce qui permet d'éviter des problèmes de dilution du plasma normal dans les compositions selon l'invention. Préférentiellement, on utilise un pool de sérum contenant plus de 2000 % de facteur Va, et, plus préférentiellement, plus de 2200 %. De telles quantités en facteur Va dans le sérum permettent de l'utiliser dans des gammes de dilutions finales comprises entre 1/300 et 1/1200, et préférentiellement entre 1/400 et 1/1000. Avantageusement, le sérum animal utilisé est traité de façon à éliminer ou éviter les effets des facteurs susceptibles d'être à l'origine d'une instabilité ou d'une interférence. Ces facteurs sont notamment des facteurs dépendants de la vitamine K, tels les facteurs II, VII, IX, X, Protéine S, Protéine C, Protéine Z. On élimine également les traces de fibrine par la bentonite. Ces facteurs peuvent être éliminés en réalisant une adsorbtion du sérum sur du sulfate de baryum, tel que décrit par SOULIER J.P., (1975). Selon un autre aspect, la présente invention vise des compositions utiles en tant que contrôles pathologiques ou calibrants dans une méthode de détection d'une résistance à la PCa, comprenant du plasma normal et du sérum animal riche en facteur Va. Préférentiellement, le plasma normal est du plasma humain, et plus préférentiellement du plasma humain citraté. Dans une variante avantageuse, lesdites compositions comprennent du sérum de bovin, contenant plus de 2000 % de facteur Va et préférentiellement plus de 2200 %. Le sérum est présent dans les compositions à des dilutions allant du 1/300e au 1/1200è et de préférence du 1/400è au 1/ 1 000è. Le pool de sérum est de préférence traité comme décrit ci-dessus, par adsorption sur du sulfate de baryum et la bentonite. Les compositions selon l'invention peuvent avantageusement se présenter sous forme lyophilisée. La présente invention comprend également un procédé de préparation desdites compositions. Celles-ci consistent à effectuer une gamme de dilutions d'un pool de sérum animal riche en facteur Va, préférentiellement du sérum de bovin contenant plus de 2000 % de facteur Va et, plus préférentiellement, plus de 2200 %, dans un plasma normal ou un pool de plasmas normaux, de préférence humains, et à sélectionner les échantillons pour lesquels le temps de coagulation en présence de PCa se situe dans l'intervalle défini pour le temps de coagulation en présence de PCa d'un plasma APC-R. Un protocole de préparation détaillé des compositions selon l'invention est décrit ci-dessous. 1. Matières premières À Plasma humain À Acide chlorhydrique R.P À Sodium hydroxyde R.P ò Sérum de boeuf adsorbé congelé 2. Fabrication: 2.1. Préparation du sérum Le sérum est préparé à partir de plasma de bovin coagulé par un mélange de thrombine, phospholipides, Ca2+. À le sérum de boeuf congelé et préalablement adsorbé à 37 C pendant 30 minutes sur du sulfate de Baryum 10 % P/V (2 fois) est décongelé, le sérum est adsorbé sur de la bentonite (5%o) pendant 20 rnminutes, et À le surnageant obtenu après centrifugation est filtré. 2.2. Sélections des compositions: À une gamme de dilutions du sérum est préparée dans un pool de plasma humains normaux pour obtenir des dilutions finales du sérum 1( comprises entre 1/300 et 1/1200, une agitation est effectuée pendant 5 minutes à température ambiante, les échantillons préparés sont testés selon la méthode "STA- Staclot APC-R" telle que décrite dans "A New Chronometric Assay based on the Va Dependent procoagulant activity of a snake venom for the deétection of Factor V 'Leiden", X7VIh Congress of the IS-H - Florence (Italy), 6-12 June 1997 par rapport à un pool de références (sur STA), - l'échantillon pour lequel le temps de coagulation en présence de PCa est compris entre 60 et 70 secondes, correspondant au rapport normalisé d'un plasma APC-R compris entre 0,85 et 1, 1 5 (temps de coagulation en présence de PCa compris entre 160 et 190 secondes) est sélectionne. 2.3. Une lyophilisation standard est effectuée pendant 48 heures L'utilisation des compositions selon l'invention dans une méthode de détection d'une résistance à la PCa permet de vérifier la qualité du dosage realise. o10 L'invention a donc également pour objet une méthode de détection d'une résistance à la Pca dans un plasma à tester qui consister à comparer le temps de coagulation mesuré pour ledit plasma avec le temps de coagulation mesuré pour des compositions contrôles conformes à l'invention présentant chacune des dilutions différentes du sérum animal riche en facteur Va. Le temps de coagulation mesuré pour la composition conforme à l'invention le plus proche de, voire identique à celui mesuré pour le plasma à tester sera révélateur du niveau de résistance à la Pca dudit plasma car on connaît exactement la quantité de facteur Va ajoutée à ladite composition contrôle. La méthode de coagulation utilisée peut être chronométrique ou chromogénique. Il s'agit préférentiellement d'une méthode chronométrique basée sur la mesure du temps de coagulation de l'échantillon à étudier, additionné d'un plasma déficient en facteur V, d'un venin (facteur V dépendant) et de Ca Cl2 avec ou sans PCa. Les compositions de l'invention peuvent donc avantageusement entrer dans la constitution d'un kit de diagnostic d'une résistance à la protéine C activée, à titre de contrôle pathologique. Elle se présenteront préférentiellement sous forme lyophilisée pour leur conservation, et seront reconstituées au moment de l'emploi avec de l'eau distillée. La présente invention a également pour objet un tel kit de diagnostic. L'invention sera mieux comprise à la lumière des exemples ci-après qui ne sont donnés qu'à titre purement illustratif EXEMPLES: Dans tous les tableaux ci-après, "-Pca" signifie qu'aucun ajout de Pca n'a été effectué dans l'échantillon, "+Pca" signifie que de la Pca exogène a été ajoutée à l'échantillon. Exemple 1: Préparation d'un calibrant. La détermination du temps de coagulation est réalisée sur un automate STA par un dosage chronométrique selon la méthode STA- STACLOT-APC-R citée précédemment. Le plasma humain normal est du plasma citrate obtenu à partir d'un pool de 30 plasmas normaux. Le pool de sérum animal utilisé est du sérum de bovin contenant plus de 2200 % de facteur Va. Les temps de coagulation en fonction de la dilution du sérum dans le plasma sont reportés dans le tableau I ci-dessous. Les temps de coagulation (exprimés en secondes) diminuent avec les dilutions finales du sérum dans le plasma. L'utilisation d'un sérum selon l'invention permet donc d'obtenir des compositions utiles en tant que calibrants. Tableau 1: Dilution finale du 1/100 1/200 1/300 1/400 1/500 1/700 1/1000 0 sérum Temps de 24,5 38.8 47.8 52.7 57.3 61.2 77.4 18X) coagulation Exemple 2: Comparaison des résultats obtenus avec la méthode "Coatest APC-résistance" (CHROMOGENIX) et la méthode STA- STACLOT APC-R. Dans le tableau Il sont reportés des résultats obtenus avec un exemple de composition selon l'invention utilisée en tant que contrôle pathologique dans la méthode "COATEST APC-Résistance" et dans la méthode STA-STACLOT-APC-R citée précédemment. Le tableau II indique que les compositions de l'invention peuvent avantageusement être utilisées dans un test de détection de la résistance à la PCa. Tableau I: Composition selon Pool de plasmas humains l'invention normaux Temps de Rapport Temps de Rapport coagulation standard coagulation standard - PCa + PCa (APC-SR) - PC + PCa (APC- SR) Méthode COATEST 39,6 61,3 1.54 57,8 218,9 3, 78 Méthodc STA-STACLOT 38,5 67,2 1.74 50,7 177.8 3,51 APCR Exemple 3: Reproductibilité intra-essai. Afin d'estimer la reproductibilité intra-essais des Contrôles Pathologiques sur STA, on a, à partir de trois compositions contrôles pathologiques, effectué 21 déterminations avec le même kit de réactifs, STA STACLOT APC-R. Les résultats concernant le coefficient de variation (CV) sont donnés dans le tableau III ci-dessous. Ils indiquent que le CV du rapport normalisé nSR -APC-R ou du temps en présence de PCa est inférieur à 5 %. Tableau III: CRT P: 7349AID CRT P: 8005A2D CRT P: 8005B3D -PCa +PCa APC-SR n-APC-SR -PCa +PCa APC-SR n-APC-SR -PCa + PCa APC-SR n-APC-SR Pool 08/97 37.2 158.4 4,26 40.3 155.0 3,87 I 40.1 80.9 2.02 0,50 37.5 67,8 1,81 0.44 38,4 68.4 1.78 0,44 2 40,8 80.4 1,97 0.48 38.6 67.6 1,75 0.43 39,0 70.8 1.82 0,45 3 40,2 78.5 1.95 0.48 39.0 67.4 1,73 0.43 39,4 69.9 1.77 0,44 4 41.7 79.5 1,91 0.47 38.0 70.1 1,84 0.45 39,2 69.7 1.78 0.44 40.4 82.3 2,04 0.50 39.0 68.6 1.76 0.43 39. 5 68.3 1.73 0,43 6 40.2 79.7 1,98 0.49 38.4 67.2 1,75 0.43 38,6 69.2 1.79 0.44 7 40.4 78.4 1.94 0.48 38.4 67.7 1.76 0.43 38,9 68.9 1.77 0,44 8 39.5 77.4 1,96 0.48 38.5 67,8 1,76 0,43 38,8 71.0 1.83 0,45 9 40.1 80.0 2.00 0.49 38.3 69,1 1,80 0.44 38,4 69.6 1.81 0,45 40.8 78.3 1.92 0.47 38.6 68,2 1,77 0.43 38, 6 70.1 1.82 0,45 11 41.3 80.7 1.95 0.48 38.7 67.7 1.75 0. 43 38,6 69.7 1.81 0,44 12 40.5 79.1 1.95 0.48 38.3 68.0 1,78 0. 44 39,0 68,3 1.75 0,43 13 40,0 79.0 1.98 0.49 38.6 68,1 1,76 0, 43 39,1 69.9 1.79 0,44 14 40,6 80.3 1.98 0.49 38.6 68.2 1,77 0. 43 39,1 68.3 1.75 0,43 41.0 77.6 1.89 0.47 39.0 69.5 1.78 0.44 39, 3 68.7 1.75 0,43 16 40.3 78.7 1.95 0.48 38.2 67.9 1,78 0. 44 38,9 67.8 1.74 0,43 17 41,2 80.8 1.96 0.48 38.8 69,0 1.78 0. 44 39,6 69,1 1.74 0,43 18 39,8 78.0 1.96 0.48 38.9 69,0 1.77 0. 44 38,9 68.6 1.76 0,43 19 40.0 80.8 2.02 0.50 38.7 68.4 1,77 0. 43 39,0 67.8 1.74 0,43 41,3 80,2 1.94 0.48 38.1 69,2 1.82 0.45 38, 6 69,2 1.79 0,44 21 40,7 79.3 1.95 0.48 38.8 68,0 1,75 0. 43 38,8 68.2 1,76 0,43 MOY 40.52 79,52 1.96 0. 48 38.52 68,31 1,77 0.44 38,94 69.12 1.78 0,44 NJ SD 0.56 1.26 0,04 0.01 0.37 0.75 0.03 0. 01 0.34 0,92 0.03 0,01 -4 CV 1.38 1.59 1,81 1,81 0,97 1.10 1.49 1.49 0, 87 1,33 1,66 1,66 O Exemple 4: Reproductibilité par lot. On a ici testé sur STA avec un même lot de réactifs (STA STACLOT APC-R: 010), 3 lots de compositions contrôles pathologiques. Chaque plasma est testé 2 fois dans une même série (sur I flacon). 15 séries indépendantes ( 15 flacons du même lot) ont été réalisées. Le tableau IV ci-après montre que le coefficient de variation (CV) des temps avec PCa est inférieur à 5 %. Tableau IV: Flacons CRT P: 7349A1D CRT P: 8005A2D -PCa + PCa APC-SR n-APC-SR PCa +PCa APC-SR n-APC-SR I 42,2 83,2 1,97 0,48 39.0 68,7 1,76 0,43 42,2 83,4 1.98 0.48 39,1 70,1 1.79 0,44 2 41,9 83,6 2,00 0,49 39() 68.7 1.76 0,43 42,5 82,0 1,93 0,47 39.3 68,5 1.74 0,43 3 41,3 82,2 1,99 0,49 39,0 68,3 1,75 0,43 42,2 81,4 1.93 0,47 39,2 68,1 1,74 0,42 4 42,0 83,3 1,98 0,48 40.0 68,5 1,71 0,42 41,6 82,4 1,98 0,48 39,7 68,7 1,73 0,42 42,1 81,8 1,94 0,47 39,0 68,3 1,75 0,43 41,8 79,8 1.91 0,47 39,2 69.6 1,78 0,43 6 42,2 82,4 1,95 0,48 39,3 67,7 1,72 0,42 41,7 81,8 1.96 0.48 39,0 69.8 1.79 0,44 7 41,1 80.7 1,96 0,48 39.0 68,2 1,75 0.43 41.4 80,1 1,93 0,47 39,0 68,6 1,76 0,43 8 41,8 82,0 1,96 0,48 38,4 68,5 1.78 0,44 41,5 81,2 1,96 0,48 39,0 68.4 1,75 0,43 9 41,3 81,1 1,96 0,48 39,8 67,9 1,71 0,42 41,4 80.9 1,95 0,48 40,1 70,1 1,75 0,43 40.6 80,6 1,99 0,48 39,2 67,9 1,73 0.42 41,3 81,9 1.98 0,48 39,1 67,7 1,73 0,42 11 40.6 78,9 1,94 0.47 39.4 69,1 1.75 0,43 41.1 82.6 2,01 (0,.49 40.1 67,8 1.69 0,41 12 40.0 79,6 1,99 0.49 40.4 67,9 1.68 0,41 41.0 79.0 1.93 0.47 40,2 68,4 1,70 0,42 13 39.4 81.0 2,06 0.50 39,4 68.9 1,75 0.43 39,9 82,0 2.06 0,50 39,9 67,1 1,68 0,41 14 39.3 81,2 2.07 0,50 39,3 68,9 1.75 0,43 39,4 79,9 2.03 0,50 39,4 68,4 1.74 0,42 38,7 81.6 2.11 0,51 38.7 68,1 1.76 0,43 38,7 81,4 2,10 0,51 38,7 68,9 1,78 0,43 MOY 41,1 81.4 1.98 0.48 39.3 68,5 1,74 0,43 SD 1.02 1.27 0,05 0,01 0,48 0,71 0,03 0,(01 CV 2.48 1,55 2,33 2,33 1.23 1,04 1,69 1,69 Tableau IV (suite): Flacons CRT P 8005B3D -PCa +PCa APC-SR n-APC-SR 1 39.2 69.4 1,77 0,43 4()( 69,0 1.73 0,42 2 39,4 69.6 1.77 0.43 39.6 68.9 1.74 0,42 3 40,2 68,5 1,70 0.42 39.5 68,5 1,73 0,42 4 39,7 69.8 1,76 0,43 39,7 70,0 1,76 0.43 39,5 72,8 1,84 0,45 39.8 69,7 1,75 0,43 6 40),7 69,8 1,71 0,42 39,8 71.0 1.78 0.44 7 39,3 69.9 1.78 0,43 39,3 69.0 1.76 0.43 8 39.4 68,6 1,74 0,43 39,5 68.8 1.74 0,43 9 39.3 68.2 1.74 0.42 39.3 67,9 1,73 0.42 39,4 68,6 1.74 0.43 39.2 69.2 1.77 0,43 11 39,2 69.5 1.77 0,43 39.7 68,0 1,71 0.42 12 39,3 67,5 1,72 0,42 ,2 68.4 1,70 0,42 13 39.7 66,4 1,67 0,41 ,1 64,6 1,61 0,39 14 39.6 67.0 1.69 0.41 39.4 66,5 1,69 0,41 39.0 65.7 1.68 0.41 39.7 67,0 1,69 0.41 MOY 39.6 68.6 1,73 0,42 SD 0,37 1,61 0,04 0.01 CV 0,95 2,35 2.49 2.49 Exemple 5: Reproductibilité iour àiour. Dans le but d'estimer la reproductibilité jour à jour, un même lot de Contrôle Pathologique a été testé sur 10 jours avec le même lot de réactifs (STA Staclot APC-R 010) sur le même STA. Les rapports normalisés découlent d'un dosage journalier du même pool aliquoté. Le tableau V ci-après montre que le CV des rapports ou des temps en 1o présence de PCa jour à jour est inférieur à 5 %. Tableau V: Jours CRT P: 7349A1D CRT P 8005A2D CRT P: 8005B3D - PCa +PCa APC n-APC -PCa +PCa APC n-APC -PCa +PCa APC n-APC -SR -SR -SR -SR -SR -SR Pool 08/97 40).1 162,4 4,05 I 40,9 78.9 1,93 0,48 39,1 68,0 1,74 0,43 39,7 69,9 1,76 0,43 2 40,8 78,4 1,92 0,47 39,7 69,4 1,75 0.43 39,5 69,2 1.75 0.43 3 41,8 77,9 1,86 0,46 39,3 66,3 1,69 0,42 39,7 67.4 1,70 0.42 4 41,9 78,5 1,87 0,46 39,3 65.8 1,67 0,41 39,6 68,7 1,73 0.43 41,7 83,2 2,00 0,49 39,0 68,4 1,75 0.43 39.7 70,5 1,78 0,44 6 42,2 82,4 1.95 0.48 38,8 67,8 1,75 0,43 39,6 69,4 1,75 0,43 7 40,7 84,5 2,08 0.51 39.4 70.2 1.78 0.44 40,3 72,3 1,79 0,44 8 42,2 84,9 2,01 0,50 39,6 69,3 1.75).43 40,2 72,2 1,80 0.44 9 40,8 81,1 1,99 0,49 38,6 69,5 1,8 0,44 38,9 68,9 1.77 0.44 41.5 80,6 1,94 0,48 39.1 69.6 1.78 0.44 38,9 68,3 1.76 0.43 * MOY 41,45 81.04 1.96 0,48 39.19 8,43 1.75 0.43 39,61 9,68 1,76 0,43 SD 0.6 2,61 0,06 0,02 0.34 1,47 0,04 0,01 0,46 1,60 0,03 0.01 CV 1,44 3,22 3,30 3,30 0,87 2,14 2,27 2,27 1.15 2,29 1,64 1, 64 Exemple 6: Recouvrement lot à lot. 3 Contrôles Pathologiques sont déterminés sur I même lot de s réactifs (STA Staclot APC-R 010). Chaque échantillon a fait l'objet de 5 mesures. Un même pool a également été dosé en parallèle pour déterminer le nSR-APC-R. Le tableau V1 ci-dessous indique qu'il existe un bon recouvrement des lots, la valeur cible étant 0,40-0,55 pour un contrôle pathologique. Tableau VI: CRT P: 7349A1D CRT P: 8005A2D CRT P 8005B3D -PCa +PCa APC- -APC -PCa +PCai APC n-APC -PCa +PCa APC n-AP SR -SR -SR -SR -SR -SR Pool o8/97 36.7 161.7 4.41 39.4 163.8 4.16 1 41.3 85.8 2.08 0.49 40.7 70.8 1.74 0.41 39.9 70.9 1.78 0.42 2 42.5 86.8 2.04 0.48 39.8 70.9 1,78 0,42 39.8 71.8 1,80 0.42 3 42.6 85.7 2.01 0.47 40.0 70,5 1.76 0.41 40.4 71.3 1.76 0. 41 4 42.0 85.() 2.02 0.47 39,6 69,6 1.76 0.41 40.2 71.4 1.78 0. 41 42.1 85.4 2.03 0.47 40,8 72,3 1.77 0.41 39.5 70,8 1.79 0,42 MOY 42.10 85.74 2,04 0.48 40.18 70.82 1.76 0.41 39.96 71.24 1.78 0, 42 SD 0.51 0.67 0.03 0.01 0.54 0.97 0.02 0.00 0.35 0.40 0.02 0.00 CV 1.22 0.78 1.24 1.24 1.34 1.37 0.90 0.90 0.88 0,57 0,86 0.86 L'analyse des résultats inter-lots de réactifs STA Staclot APC-R regroupés dans le tableau VII suivant montre également un bon recouvrement inter-lots de réactifs. La déviation maximum d'un lot à l'autre est inférieure à 0,04 (valeur absolue) du nSR-APC-R pour le contrôle pathologique. Tableau VII: STA STACIOT APCR 008 STA STACIOT APCR 009 STA STACLOT APCR 010 -PCa +PCa APC- n-APC -PCa +PCa APC- n-APC -PCa +PCa APC n-APC SR -SR SR -SR -SR -SR Pool SI)6 002 46.5 180.9 3.89 46.3 185.7 4.01 42.2 168.0 3.98 45.9 179.6 3.91 46.2 184.9 4.0() 42.1 167.8 3.99 CRIT P: 7349AID 45.8 86,8 1,90 0.49 44.5 89.4 2.01 0.50 41.3 82.3 1.99 0. 50 47.1 87.1 1,85 0.47 44.5 88,3 1.98 0,50 42,1 83,0 1.97 0.49 CRT P: 8005A2D 44.3 73.6 1,66 0.43 43,0 76,2 1.77 0,44 39.4 68.4 1,74 0, 44 44.4 74,9 1,69 0.43 42,4 74,0 1,75 0,44 39,7 70,4 1.77 0,45 CRT P: 8005B31) 44.5 75,9 1.71 0.44 43,4 74,6 1.72 0,43 39,7 70,3 1,77 0,44 45.4 74.5 1.64 0.42 43.0 76.5 1.78 0,44 40.7 70.2 1,72 0,43 Exemple 7: Etude de la stabilité. 1. Conservation: Une étude de stabilité accélérée a été réalisée sur les compositions contrôles pathologiques à 30 C pendant 3 + 2 semaines, en comparaison à ces mêmes contrôles conservés à 2- 8 C. L'étude des résultats regroupés dans le tableau VIII montre 0 une bonne conservation des contrôles sous forme lyophilisée (A relatif des temps + PCa sur 3 semaines Tableau VIII: Conservation des contrôles pathologiques APCr pendant 3, 4, 5 semaines à + 30 C Pool F 08/97 STA 502 Contrôles ardés a 4 C 3 semaines 4 semaines 5 semaines -PCa +PCa APC n-APC -PCa +PCa APC n-APC -PCa +PCa APC n-APC -PCa +PCa APC n-APC -SR -SR -SR -SR -SR -SR -SR -SR 7349AI1D 41.5 80.6 1,94 0.48 42.0 79.8 1.90 0,47 42.0 80.4 1,91 0.47 41.8 82.0 1.96 0.48 8006A2D 39.4 67.6 1.72 0.42 39.8 68.2 1.71 0.42 39.2 68.6 1.75 0,43 39.2 68.8 1.76 0.43 8006B3D 40.2 69.4 1,73 0.42 39,7 69.2 1.74 0.43 39,9 69.9 1.75 0.43 39,7 70,8 1.78 0,44 Delta relatif (T0/T3 sem.) Delta relatif (TO/T4 sem.) Delta relatif (T0/T5 sem.) -PCa +PCa APC n-APC -PCa +PCa APC n-APC -PCa +PCa APC n-APC -SR -SR -S -SR -SR -SR -SR 7349A1D 1.1 -0.9 -2.0 -2.0 1.2 -0.2 -1.4 -1.4 0.7 1.7 1.0 1.0 8006A2D 1.1 -1.0 0.2 0.2 -0.4 1.5 1,9 1.9 -0.5 1.9 2.4 2.4 8026B3D -1.1 -0.2 0.9 0.9 -0.6 0,7 1,4 1,4 -1,1 2,0 3,2 3.2 -PCa +PCa APC -SR Pool 08/97 37.3 158.3 4.24 40.2 157.2 3.91, 0-- OC) Go 2. Stabilité des réactifs: À On a étudié la stabilité des contrôles après leur première reconstitution à 4 températures: - 2-8 C, flacons bouchés (étude de 3 lots), - 25 C, flacons bouchés (étude de 3 lots) placés à l'étuve, - 15-19 C sur STA, flacons ouverts (étude de 3 lots). - - 20 C, flacons bouchés. Toutes les déterminations des temps de coagulation ont été réalisées sur STA en duplicata sur un même lot de réactifs (Staclot APC-R (0 10)) et par rapport au même pool aliquote. L'analyse des données regroupées dans les tableaux IX, X, XI et XII permet de proposer comme stabilité - stabilité dans l'appareil: 8h - stabilité à 2-8 C: 8h - stabilité à 25 C: 6h. - stabilité à - 20 C: > 24h. TABLEAU IX: Stabilité des contrôles P APCr à 2-8 C (flacons fermés) Staclot APCR 010 T = 0 T = 4 heures T = 8 heures T = 12 heures -PCa +PCa APC n-APC -PCa +PCa APC n-APC -PCa +PCa APC n-APC -PCa +PCa APC n-APC -SR -SR -SR -SR -SR -SR -SR -SR Pool 08/97 39,6 163,3 4.12 7349AID 40.1 82.3 2,05 0.50 41L0 84.6 2.06 0.50 41.0 84.4 2,06 0.50 42.5 86,7 2,04 0.50 8005B3D 39,2 72,2 1.84 0.45 39.6 72.9 1.84 0.45 39.9 74.7 1,87 0.45 40.6 76.4 1.88 0.46 8026A4D 37,5 64.0 1. 71 0.41 37.6 64.8 1.72 0.42 38.9 65.5 1,69 0,41 38.7 66,9 1.73 0.42 T = 20 heures T = 24 heures Delta relatif % (T0/T8) Delta relatif % (T0/12) -PCa +PCa APC n-APC -PCa +PCa APC n-APC - PCa +PCa APC n-APC -PCa +PCa APC n-APC -SR -SR -SR -SR -SR -SR | |- SR -SR 7349AID 42.5 89,4 2.10 0.51 43.3 89.6 2.07 0.50 2.2 2.6 0.4 0'4 6.1 5.4 -0,7 -0.7 8005B3D 42.0 79.4 1.89 0.46 41.5 79.5 1.92 0.47 1.8 3.4 1.6 1.6 3.4 5.8 2.3 2.3 8026A4D 39.7 70.1 1.77 0.43 40.8 72,8 1.78 0.43 3.6 2.3 -1.2 -1,2 3.1 4.5 1.3 1.3 OC Co TABLEAU X: Stabilité des contrôles P APCr à 25 C (flacons fermés) Staclot APCR 010 T=0 T = 2 heures T = 4 heures -PCa +PCa APC-SR n-APC-SR -PCa +PCa APC-SR n- APC-SR -PCa +PCa APC-SR n-APC-SR Pool 08/97 40.2 156,9 3,90 7349A1D 41.5 83.0 2.00 0,51 41.1 81,3 1.98 0,51 41,0 82.4 2,01 0.51 t'à 8005B3D 38.8 69.5 1,79 0.46 39.1 70.9 1,81 0,46 39,2 70.5 1,80 0,46 8026A4D 37.9 64.2 1.69 0.43 37,7 63,4 1,68 0,43 37,5 63.6 1.70 0.43 T = 6 heures T = 8 heures Delta relatif % (T0/T8) -PCa +PCa APC-SR n-APC-SR -PCa +PCa APC-SR n-APC-SR -PCa +PCa APC-SR n-APC-SR 7349A1D 41.3 82.7 2.00 0.51 41.4 83.1 2,01 0,51 -0,2 0,1 0.4 0.4 8005B3D 39.1 70,6 1.80 0,46 39,9 71,0 1,78 0,46 2,8 2,2 -0.6 -0.6 8026A4D 38.1 63.9 1.68 0,43 37.8 63,5 1,68 0,43 -0,3 -1.0 -0.8 -0.8 "-- OC- (D TABLEAU XI: Stabilité des contrôles P APCr on board (dans l'appareil) STA Staclot APCR 010 T = 0 T = 2 heures T = 4 heures T = 6 heures -PCa +PCa APC n-APC -PCa +PCa APC n-APC -PCa +PCa APC n-APC -PCa +PCa APC n-APC -SR -SR -SR -SR -SR -SR -SR -SR Pool 08/97 39.1 158,5 4.05 7349AID 41.8 82,1 1.97 0.49 42.7 84.4 1.98 0,49 42.0 83.1 1.98 0,49 42.3 82.1 1.94 0,48 8005B3D 40.0 70,9 1.77 0.44 40.8 71.2 1.75 0,43 40.5 71.3 1.76 0,43 40.2 72.2 1.80 0,44 8026A4D 37. 1 62,9 1.69 0.42 37,8 64.2 1,70 0,42 37.8 64.8 1, 72 0,42 38.1 63,6 1.67 0,41 T = 8 heures T = 10 heures Delta relatif% (T0/T8) Delta relatif % (T0/10) -PCa +PCa APC n-APC -PCa +PCa APC n-APC -PCa +PCa APC n-APC -PCa +PCa APC n-APC -SR -SR -SR -SR -SR -SR -SR -SR 7349A1D 41.6 82,7 1.99 0.49 42,1 83.7 1.99 0.49 -0,4 0.7 1.0 1,0 0.7 1,9 1.2 1.2 8005B3D 40.0 71,9 1.80 0.44 39.8 71,5 1.80 0.44 0,1 1,5 1.4 1,4 -0,5 0.9 1.4 1,4 8026A4D 37,8 64.4 1.71 0,42 37,9 64.3 1,70 0.42 1,8 2,5 0,7 0,7 2,0 2.2 0.2 0,2 - O0 (D TABLEAU XII: Stabilité des contrôles pathologiques APCr à -20 C STA STACLOT APCR 010 Contrôles "frais" Contrôles gardés 24h à -20 C Delta relatif % - PCa +PCa APC n-APC -PCa +PCa APC n-APC -PCa +PCa APC n-APC -SR -SR -SR -SR -SR -SR Pool 08/97 40.1 163.0 4.06 CRTP: 7349A1D 41.1 81.3 1.98 0.49 41.3 83.4 2.02 0. 50 -0.5 -2.6 -2.1 -2.1 CRT P 8005B3D 39.8 71.2 1.79 0,44 39.4 71.1 1.81 0. 44 1.1 0.1 -1.0 -1.0 CRT P: 8026A4D 38.0 62,2 1.69 0,42 37.8 63.4 1,68 0. 41 0.5 1.3 0.8 0.8 O0 GO CD Exemple 8: Exemples de compositions utiles à titre de contrôles pathologioues. Le tableau XII ci-après résume les caractéristiques de trois compositions selon la présente invention. Tableau XHII: Contrôle CP7349A1 8005B3D 8005A2D 8005A2D Pathologique APC-R Plasma normal Plasma Plasma Plasma Plasma humain humain humain humain 08/97 26.11.97 07.01.98 20.11.97 TP 12,6" 13, 1 " 12,8" 12,0" APTT 30,8" 30,9" 31,8" 30,8 Protéine S 101% 113% 96 % 113 % pH avant 7,20 7,01 6,86 7,01 ajustement Sérum de boeuf 0228 (2680 0230 (2300 0227-0228- 0229 (2320 adsorbé réf. %) %) 0230 %) Dilution du sérum 1/10(0è 1/714è 11500è 1/500è nSR-APC-R avant 0,46 0,41 0,40 0,4() lvophilisation nSR-APC-R après 0,48 0,42 0,42 0.43 lyophilisation Temps+PCa après 79.5 69,2 63,2 68,3 lyophilisation Type de flacons: DIN 14 silicones. 1o Lyophilisation: standard 48 h. Exemple 9: Exemple de kit contenant à titre de contrôle pathologique des compositions selon l'invention. Composition: À Chaque coffret contient 12 flacons (6 normaux et 6 pathologiques) de plasma citrate lyophilisé (1 ml après reconstitution). Exemple de valeur: Chaque coffret de Contrôles Normal et Pathologique APC-R contient un papillon qui renferme les informations suivantes: n de lot, référence du coffret, référence du réactif, date de péremption, valeur déterminée sur STA du rapport standard et du rapport normalisé. Ce rapport normalisé est déterminé par rapport à un pool de référence. Ces rapports peuvent varier d'un lot à l'autre mais sont indiqués précisément pour chaque lot (voir papillon inclus dans le coffret). Préparation du réactif: Ajouter très exactement 1 ml d'eau distillée dans chaque flacon. Agiter doucement jusqu'à complète dissolution. Laisser la solution se stabiliser pendant 30 minutes à température ambiante (18-25 C), homogénéiser avant emploi. Stabilité des réactifs: À Lyophilisation à 2-8 C pour une conservation possible jusqu'à la date de péremption indiquée sur le coffret. - Reconstitution avec de l'eau distillée sachant que la stabilité des lots est la suivante: - 8h sur STA (15-19 C) ) - 8h à 2-80C - 6hà250 C. Mode d'emploi: Les plasmas contrôles sont utilisés de façon identique à celle des plasmas à tester. REFERENCES - AMERL. et al., Thromb. Res., 1990, 57, pages 247-258, - BERTINA R.M. et al., Natlure, 1994, 369, pages 64-68, - DAHLBACK B. et al., Ihromb. Haemost., 1991, 65, abstract 39, page 658. - DAHLBACH B. et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1993, 90, pages 1004- - DAHLBACK et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1994, 91, pages 1396- 1400. - DE RONDE H. et al., Thromb. Haemost., 1994, 72, pages 880-886, KALAFATIS M.et al., J. Biol. Chem., 1994, 269, pages 31869-31880, - KARGES HE. et al., Arzneim.-Forsch. / Drug Res., 44 (1), Nr. 6 (1994), P. 793-79 7). - LEWIS J.H.: Comparative Hemostasis in vertebrates, 1996, page 339 MITCHELL C.A. et al., N. Engl. J. Med., 1987, 317, pages 1638-1642, SOULIER J.P., NI?+H, 1975, tome 15, N 2, pp 195-212 - SVENSSON P.J. et al., N. Engl. J. Med., 1994, 330, pages 517-522, - VARADI K. et al., 7hromb. Haemost., 1995, 73, pages 730-731 REVENDICATIONS - Utilisation d'un sérum animal riche en facteur Va pour la préparation de compositions utiles en tant que contrôles pathologiques ou calibrants dans une méthode de détection d'une résistance à la protéine C activée (PCa). 2- Utilisation selon la revendication 1 caractérisée en ce que le sérum animal est du sérum de bovin. 3- Utilisation selon la revendication I ou 2 caractérisée en ce que le sérum est préalablement traité de façon à éviter les effets de facteurs dépendants de la vitamine K. 4- Utilisation selon la revendication I ou 2 caractérisée en ce que le sérum est préalablement traité de façon à éliminer les facteurs II, VII, IX, X, PS, PC et PZ, ainsi que les traces de fibrine. - Utilisation selon l'une des revendications 1 à 4 caractérisée en ce que le sérum est préalablement adsorbé sur du sulfate de baryum et de la bentonite. 6- Utilisation selon l'une des revendications I à 5 caractérisée en ce que le sérum animal contient une quantité de facteur Va supérieure à 2 000 %. 7- Utilisation selon la revendication 6 caractérisée en ce que le sérum animal contient une quantité de facteur Va supérieure à 2200 %. 8- Composition utile en tant que contrôle pathologique dans une méthode de détection d'une résistance à la protéine C activée comprenant du plasma normal et du sérum animal riche en facteur Va. 9- Composition selon la revendication 8 caractérisée en ce que le plasma normal est du plasma humain, de préférence du plasma humain citraté. 10- Composition selon la revendication 8 ou 9 caractérisée en ce que le sérum animal est du sérum de bovin. 11- Composition selon l'une des revendications 8 à 10 caractérisée en ce que le sérum est préalablement traité de façon à éviter les effets de facteurs dépendants de la vitamine K. 12- Composition selon l'une des revendications 8 à 10 caractérisée en ce que le sérum est préalablement traité de façon à éliminer les facteurs II, VII, IX, X, PS, PC et PZ ainsi que les traces de fibrine. 13- Composition selon l'une des revendications 8 à 12 caractérisée en ce que le sérum est préalablement absorbé sur du sulfate de baryum et de la bentonite. 14- Composition selon l'une des revendications 8 à 13 caractérisée en ce que le sérum animal contient une quantité de facteur Va supérieure à 2000 %. - Composition selon la revendication 14 caractérisée en ce que le sérum animal contient une quantité de facteur Va supérieure à 2200 %. 16- Composition selon l'une des revendications 8 à 15 caractérisée en ce que la dilution finale du sérum animal est située dans une gamme comprise entre 1/300 et 1/1200. 3O 17- Composition selon la revendication 16 caractérisée en ce que la dilution finale du sérum animal est comprise entre 1/500 et 1/1000. 18- Procédé de préparation de compositions selon la revendication 8 caractérisé en ce que l'on effectue une gamme de dilutions d'un sérum animal riche en facteur Va dans un plasma normal et l'on sélectionne les compositions pour lesquelles le temps de coagulation en présence de PCa se situe dans l'intervalle défini pour le temps de coagulation en présence de PCa d'un plasma APC-R. 19- Procédé selon la revendication 18 caractérisé en ce que le plasma normal est du plasma humain, de préférence du plasma humain citraté. 20- Procédé selon la revendication 18 ou 19 caractérisé en ce que le sérum animal est un sérum de bovin contenant plus de 2000% de facteur Va. 21- Procédé selon la revendication 20 caractérisé en ce que le sérum de bovin contient plus de 2200 % de facteur Va. 22- Procédé selon l'une des revendications 18 à 21 caractérisé en ce que le sérum est préalablement absorbé sur du sulfate de baryum et de la bentonite. 23- Utilisation d'une composition selon la revendication 8 dans une méthode de détection d'une résistance à la protéine C activée. 24- Utilisation selon la revendication 23 caractérisée en ce qu'il s'agit d'une méthode chronométrique dans laquelle les résultats sont préférentiellement exprimés sous forme de rapport normalisé. - Méthode de détection d'une résistance à la Pca consistant à comparer le temps de coagulation d'un plasma à tester avec celui de compositions selon l'une des revendications 8 à 17 et à évaluer le niveau de résistance de la Pca présenté par ledit plasma. 26- Kit de diagnostic d'une résistance à la protéine C activée, comprenant à titre de contrôle pathologique au moins une composition selon la revendication 8.