Brevet FR2778670A1 — publié le 19991119

A 2778670 La présente invention concerne le domaine des Biotechnologies. Elle concerne plus particulièrement des méthodes et constructions permettant la production de particules rétrovirales, in vitro, ex vivo ou in vivo. Elle concerne également l'utilisation de ces méthodes et constructions pour le transfert d'acides nucléiques dans les cellules. Les rétrovirus constituent aujourd'hui l'un des principaux vecteurs pour le transfert d'acides nucléiques dans les cellules. Ils sont utilisés par exemple pour le transfert d'acides nucléiques in vitro ou ex vivo (expérimentation, étude de régulation, production de protéines recombinantes, introduction de gènes de résistance ou de gène toxiques) ou directement in vivo (création de modèle pathologiques chez l'animal, études de marquage ou de biodisponibilité, utilisation thérapeutique par greffe de cellules productrices ou injection de virus purifiés, etc.). Pour toutes ces utilisations, il est donc important de disposer de techniques efficaces de production et d'administration de rétrovirus. A cet égard, les techniques utilisées classiquement reposent sur l'emploi de lignées cellulaires d'encapsidation. Ces lignées sont construites in vitro et expriment l'ensemble des protéines nécessaires à la constitution et à l'encapsidation d'un vecteur rétroviral défectif dans une particule rétrovirale. De telles lignées sont par exemples les lignées PSICRIP (Danos et Mulligan, PNAS 85 (1988) p. 6460), PA317 (Miller et Buttimore, Mol. Cell. Biol. 6 (1986) p. 2895), ou GP + Env AM12 (Markowitz et al. Virology 167 (1988) p. 400). Néanmoins, l'emploi de telles lignées peut poser un certain nombre de problèmes, liés tout d'abord à leur construction, ensuite à leur utilisation. Ainsi, ces lignées doivent être stables, c'est-à-dire exprimer les fonctions rétrovirales de manière permanente, sans réarrangements génétiques ni perte d'expression. De plus, ces lignées doivent être compatibles avec un usage pharmacologique potentiel des rétrovirus, et donc être établies à partir de cellules cultivables, faiblement voire non-immunogènes, etc. D'autre part, il est important que les lignées utilisées produisent des titres relativement élevés de virus, dépourvus de particules réplicatives contaminantes (RCV). Les procédés de préparation de rétrovirus utilisant des lignées d'encapsidation comportent donc nécessairement des étapes de contrôle de la qualité à la fois des stocks viraux produits et des lignées utilisées. Enfin, selon les applications envisagées, ces productions peuvent devoir être réalisées en respectant des degrés de confinement élevés, ce qui complique encore le caractère industrialisable de ces méthodes. Afin de remédier à ces inconvénients, il a été proposé dans la demande WO 95/22617 un nouveau concept de production de particules rétrovirales, évitant le recours aux lignées d'encapsidation de rétrovirus. Ce nouveau concept consiste à transformer une cellule cible in vitro, ex vivo ou directement in vivo, en cellule productrice de rétrovirus, en introduisant dans cette cellule l'ensemble des éléments génétiques nécessaires à la constitution d'une particule rétrovirale. Cette demande prévoit en particulier le transfert de ces éléments au moyen de constructions plasmidiques ou de vecteurs viraux d'origine différente. Feng et al. (Nature Biotechnology 15 (1997) p 866) ont par ailleurs décrit un mode particulier de mise en oeuvre de cette nouvelle approche, utilisant deux adénovirus recombinants de première génération (i.e., défectifs pour la région El), dans lesquels étaient répartis selon un schéma précis les éléments génétiques rétroviraux. La présente demande décrit maintenant une nouvelle amélioration aux techniques de production de particules rétrovirales décrites ci-dessus, et sur l'utilisation pour le transfert d'acides nucléiques. La présente demande repose notamment sur l'utilisation d'adénovirus recombinants pour délivrer à des cellules, in vitro, ex vivo ou in vivo, I'ensemble des éléments génétiques nécessaires à la constitution d'une particule rétrovirale. Par rapport aux travaux décrits antérieurement, la présente demande repose en partie sur l'utilisation de types particuliers d'adénovirus recombinants et/ou sur 3 2778670 une répartition particulière des éléments génétiques rétroviraux. Comme démontré dans la présente demande, les méthodes et constructions selon l'invention permettent d'obtenir des taux de production de particules rétrovirales élevés, sont efficaces, présentent une sécurité accrue, aussi bien in vitro, ex vivo que in vivo. En outre, les rétrovirus recombinants défectifs produits sont infectieux, et sont capables de transférer avec une grande efficacité, un acide nucléique dans une cellule. Un premier objet de l'invention concerne donc une composition comprenant l'ensemble des éléments génétiques nécessaires à la constitution d'une particule rétrovirale, incorporés dans un ou plusieurs adénovirus recombinants défectifs pour tout ou partie des régions E1 et E4 au moins. Le terme "éléments génétiques nécessaires à la constitution d'une particule rétrovirale" désigne au sens de l'invention l'ensemble des séquences nucléiques, codantes ou régulatrices, qui agissant en cis et en trans sont nécessaires et suffisantes pour constituer une particule rétrovirale, c'est-à-dire une particule physique à la surface de laquelle l'enveloppe rétrovirale est exprimée, et à l'intérieur de laquelle se trouvent les différentes protéines nécessaires à la réalisation d'un cycle rétroviral et un génome sous une forme permettant sa rétrotranscription. L'organisation génomique des rétrovirus est bien connue, et comprend essentiellement les éléments suivants: - Une région LTR, localisée à chaque extrémité du génome rétroviral, servant notamment d'origine de transcription et de promoteur transcriptionnel. Cette région LTR se compose plus précisément d'éléments désignés U3, R et U5 (voir Figure 5, par exemple). - Une séquence d'encapsidation (Psi ou y), impliquée dans l'encapsidation du génome rétroviral dans l'enveloppe protéique. La séquence d'encapsidation peut par ailleurs comporter une région étendue à certains 4 2778670 éléments du gène gag, qui ont été décrits comme améliorant l'efficacité d'encapsidation. - Trois régions codantes, désignées gag, pol et env, codant respectivement pour les protéines du core (gag), les enzymes (transcriptase inverse, polymérase: pol) et l'enveloppe du rétrovirus (env). Pour la constitution d'une particule rétrovirale recombinante, un vecteur rétroviral est généralement construit comprenant les éléments génétiques agissant en cis, c'est-à-dire les régions LTR et la séquence d'encapsidation, et dans lequel tout ou partie des régions codantes gag, pol et/ou env (agissant en trans), sont éliminées. Habituellement, ce vecteur rétroviral comprend également une séquence nucléique d'intérêt (le transgène). Les régions codantes non présentes ou inactives dans le vecteur rétroviral sont apportées en trans (fonctions de complémentation), de manière à pouvoir reconstituer une particule rétrovirale. Dans un mode particulier de mise en oeuvre de l'invention, les éléments génétiques comprennent donc un vecteur rétroviral et les acides nucléiques codant pour les fonctions de complémentation rétrovirales (c'est-à- dire pour les fonctions défectives dans le vecteur rétroviral, i.e., gag, pol et/ou env). Dans un mode plus particulier de réalisation de la présente invention, les éléments génétiques comprennent: - un acide nucléique codant pour une protéine rétrovirale gag, - un acide nucléique codant pour une protéine rétrovirale pol, - un acide nucléique codant pour une protéine d'enveloppe, par exemple une protéine rétrovirale env, et un acide nucléique comprenant, entre deux régions LTR, une séquence d'encapsidation rétrovirale et une séquence nucléique d'intérêt. Pour la mise en oeuvre de la présente invention, les éléments génétiques peuvent provenir de différents types de rétrovirus, tels que des virus écotropes et/ou amphotropes. Il peut s'agir notamment de rétrovirus appartenant à la famille des oncovirus, des lentivirus ou des spumavirus. Dans la famille des oncovirus, on peut citer notamment les oncovirus lents, non porteur d'oncogène, tels que par exemple MoMLV, ALV, BLV, ou MMTV et les oncovirus rapides, tels que RSV par exemple. Dans la famille des lentivirus, on peut citer par exemple HIV, SIV, FIV ou CAEV. Par ailleurs, la ou les régions LTR utilisées peuvent être soit des régions LTR rétrovirales complètes, soit des sous-domaines permettant de reconstituer des LTR complets après activité reverse transcriptase. Ainsi, les LTR utilisés peuvent comprendre des délétions de domaines tels que U3 et U5 par exemple. Dans un mode particulier de mise en oeuvre de l'invention, le vecteur rétroviral comprend un LTR 5', dépourvu de région U3 et un LTR 3' dépourvu de région U5. L'emploi de ce type de construction permet notamment de stabiliser le vecteur pendant les étapes de construction et de réduire les risques de recombinaison. Les éléments génétiques peuvent être directement préparés à partir des rétrovirus isolés, selon les techniques connues de l'homme du métier, et/ou synthétisées artificiellement. Ces éléments peuvent être amplifiés en culture, comme décrit dans les exemples. En outre, les acides nucléiques utilisés peuvent être de l'ADN ou de l'ARN. Dans une variante préférée de réalisation, les éléments génétiques sont tels qu'ils codent pour des protéines gag et pol de rétrovirus et pour une protéine d'enveloppe permettant d'infecter des cellules humaines. Plus préférentiellement, encore, les protéines gag et pol sont des protéines de rétrovirus choisis parmi MoMLV, ALV, BLV, MMTV et RSV, et la protéine d'enveloppe est une protéine de virus choisi parmi A4070, GALV, RD114, VSVG ou le virus de la rage. Il est entendu que l'invention peut également être mise en oeuvre en utilisant des variants ou mutants de ces protéines, ayant conservé leur activité biologique, ou des protéines chimères ou hybrides permettant de modifier le tropisme de la particule rétrovirale, notamment de lui conférer une spécificité pour des types cellulaires particuliers. Dans un mode particulier de mise en oeuvre, la protéine d'enveloppe est donc une protéine d'origine virale ou cellulaire, permettant aux particules rétrovirales d'infecter les cellules humaines. Il peut s'agir préférentiellement d'une protéine d'un virus tel que A4070, GALV, RD1 14, VSVG ou le virus de la rage. Les enveloppes virales préférées sont A4070, GALV ou VSVG. Les protéines GAG et POL préférées proviennent des rétrovirus MoMLV. Selon un mode de réalisation particulier de l'invention, les éléments génétiques permettent la constitution d'une particule de lentivirus, et proviennent donc, au moins en partie, de lentivirus, tels que notamment HIV, SIV, FIV ou CAEV. L'utilisation de rétrovirus recombinants préparés à partir de lentivirus a été décrite dans la littérature et offre certains avantages pour le transfert de gènes dans des cellules quiescentes (Poeschla et al., Nature Medicine 4 (1998) 354). La présente invention permet à présent de mettre à profit cette propriété pour générer, dans des conditions améliorées, un transfert de gènes par les lentivirus. La répartition des éléments génétiques rétroviraux peut être réalisée de différentes façons dans le ou les adénovirus. Ainsi, selon une première variante de mise en oeuvre, I'invention concemrne une composition comprenant l'ensemble des éléments génétiques nécessaires à la constitution d'une particule rétrovirale répartis dans trois adénovirus recombinants distincts. Dans ce mode de réalisation particulier, une composition selon l'invention comprend par exemple un premier adénovirus recombinant comportant, incorporé dans son génome, le ou les acides nucléiques codant pour gag et pol; un deuxième adénovirus comportant, incorporé dans son génome, un acide nucléique codant pour l'enveloppe, et un troisième adénovirus recombinant comportant, incorporé dans son génome, le vecteur rétroviral. Selon une autre variante, préférée, de mise en oeuvre, I'invention concemrne une composition comprenant l'ensemble des éléments génétiques nécessaires a la constitution d'une particule rétrovirale répartis dans deux adénovirus recombinants distincts. A cet égard, une composition particulièrement préférée au sens de l'invention comprend: - un premier adénovirus recombinant comprenant, incorporés dans son génome, un ou plusieurs acides nucléiques codant pour les protéines rétrovirales gag et pol, et - un deuxième adénovirus recombinant comprenant, incorporés dans son génome, un acide nucléique codant pour une protéine d'enveloppe telle que défini ci-avant, et un acide nucléique comprenant, entre deux régions LTR complètes ou des sous-domaines permettant de reconstituer des LTRs complets après activité reverse transcriptase, une séquence d'encapsidation rétrovirale et une séquence nucléique d'intérêt. L'utilisation d'une telle composition est illustrée, de manière générale, sur la Figure 1. Comme montré dans les exemples, cette répartition particulière des éléments génétiques rétroviraux permet d'obtenir des titres élevés de particules rétrovirales infectieuses, capables de transférer de manière efficace et stable un transgène dans des cellules désirées. A cet égard, un objet particulier de la présente demande concerne - tout adénovirus recombinant défectif caractérisé en ce qu'il comprend, incorporé dans son génome, un ou plusieurs acides nucléiques codant pour les protéines rétrovirales gag et pol, et - tout adénovirus recombinant défectif, caractérisé en ce qu'il comprend, incorporé dans son génome, un acide nucléique codant pour une protéine d'enveloppe, et un acide nucléique comprenant, entre deux régions LTR complètes ou non, une séquence d'encapsidation rétrovirale et une séquence nucléique d'intérêt. De tels adénovirus peuvent être défectifs notamment pour tout ou partie de la région E1 (ElA et/ou E1B), E2, et/ou E4, par exemple. Un autre objet particulier de l'invention concemrne une composition comprenant deux adénovirus tels que définis ci-dessus. Une autre variante, également préférée, de mise en oeuvre de l'invention concerne une composition comprenant l'ensemble des éléments génétiques nécessaires à la constitution d'une particule rétrovirale, incorporés dans un seul adénovirus recombinant. L'avantage particulier de ce mode de réalisation réside notamment dans sa mise en oeuvre simplifiée du fait de l'utilisation d'un adénovirus unique. Il est entendu que les compositions selon l'invention peuvent être adaptées par l'homme du métier en fonction de la structure du vecteur rétroviral, et notamment des gènes rétroviraux défectifs dans celui-ci. Ainsi, le vecteur utilisé peut être défectif pour un seul, deux ou l'ensemble des gènes rétroviraux gag, pol et env. Selon le cas de figure, la composition et la répartition des adénovirus dans les compositions de l'invention peut être aisément adaptée. Néanmoins, un mode préféré de réalisation est celui dans lequel le vecteur rétroviral est défectif pour l'ensemble des gènes gag, pol et env, comme illustré dans les exemples et celui adapté à la production de lentivirus recombinants. Dans les compositions de l'invention, I'acide nucléique utilisé codant pour une protéine rétrovirale gag, pol ou env comprend généralement un promoteur transcriptionnel, situé en 5' de la région codante, et un terminateur transcriptionnel, localisé en 3' de la région codante. Les promoteurs utilisés peuvent être de nature, d'origine et avoir des propriétés variées. Le choix du promoteur utilisé dépend en effet de l'utilisation recherchée et du transgène, notamment. Ainsi, le promoteur peut être un promoteur constitutif ou régulé, fort ou faible, ubiquitaire ou spécifique de tissus/cellules, ou encore spécifique d'états physiologiques ou physiopathologiques (activité dépendante de l'état de différenciation cellulaire ou de certaines étapes du cycle cellulaire). Le promoteur peut être d'origine eucaryote, procaryote, virale, animale, végétale, artificielle ou humaine, etc. Des exemples particuliers de promoteurs sont le promoteur des gènes PGK, TK, GH, EFI- a, APO, CMV, etc. ou des promoteurs artificiels, tels que répondant à p53, E2F ou cAMP. Préférentiellement, le promoteur contrôlant l'expression de gag, pol et env est un promoteur fort constitutif. En outre, le promoteur peut également comprendre une région "enhancer" permettant d'accroître l'efficacité d'expression. Le choix de la région terminateur peut également être réalisé sans effort par l'homme du métier, notamment parmi les terminateurs des gènes GH, SV40, EFl-co, etc., largement décrits dans la littérature. Enfin, les acides nucléiques codant pour GAG et POL sont souvent utilisés sous forme d'une unité bicistronique, contrôlée par un promoteur et un terminateur uniques, comme c'est le cas dans le génome rétroviral. Comme indiqué ci-avant, les avantages de la présente invention découlent notamment de la répartition des éléments génétiques rétroviraux dans les adénovirus, et/ou du type d'adénovirus utilisé. A cet égard, comme souligné précédemment, les adénovirus utilisés dans le cadre de la présente invention sont essentiellement défectifs au moins pour la région E1 et la région E4, en tout ou en partie. Comme illustré dans les exemples, combinée à une répartition avantageuse des éléments génétiques rétroviraux, cette organisation du génome adénoviral permet d'obtenir une efficacité et une sécurité importantes. En outre, la structure génomique des adénovirus recombinants utilisés permet également la réalisation de répartitions des éléments génétiques rétroviraux originales et avantageuses, telles que notamment l'utilisation d'un adénovirus unique ou d'une combinaison de deux adénovirus tels qu'illustrés ci-avant. Les adénovirus utilisés pour la mise en oeuvre de la présente invention sont donc avantageusement défectifs pour tout ou partie des régions E1 et E4 au moins. Il s'agit avantageusement d'adénovirus recombinants défectifs "dits" de 3ème génération, c'est-à-dire défectifs pour les régions E1 et E4, en tout ou en partie, et éventuellement pour la région E3. Des variantes particulières de l'invention sont constituées par I'utilisation d'adénovirus portant des délétions affectant tout ou une partie fonctionnelle des régions suivantes: -El, E4 et E3, - El, E4 et E2, -El, E4, E2 et E3, - les régions ci-dessus ainsi que tout ou partie des gènes codant pour les fonctions tardives de l'adénovirus (L1 à L5), ou encore, - I'ensemble des régions virales codantes. La structure génomique des adénovirus a été largement décrite dans la littérature. A cet égard, le génome de l'adénovirus Ad5 a été entièrement séquencé et est accessible sur base de données (voir notamment GeneBandk M73260). De même, des parties, voire la totalité d'autres génomes adénoviraux (Ad2, Ad7, Ad12, adénovirus canin CAV-2, etc.) ont également été séquencées. De plus, la construction d'adénovirus recombinants défectifs a aussi été décrite dans la littérature. Ainsi, les demandes WO 94/28152, WO 95/02697 et WO 96/22378 par exemple, décrivent différentes délétions dans les régions E1 et E4. De même, la demande WO 96/10088 décrit des vecteurs portant une modification au niveau du gène Iva2, la demande WO 94/26914 décrit des adénovirus d'origine animale, la demande WO 95/29993 décrit des délétions portant sur la région E2 de l'adénovirus. Avantageusement, I'adénovirus recombinant utilisé dans le cadre de I'invention comprend une délétion dans la région E1 de son génome affectant les régions Ela et Elb. A titre d'exemple précis, on peut citer des délétions affectant les nucléotides 454-3328; 382-3446 ou 3574020 (par référence au génome de l'Ad5). D'autre part, la délétion dans la région E4 affecte préférentiellement I'ensemble des phases ouvertes, telles que par exemple les délétions 33466- 35535 ou 33093-35535 ou une partie seulement de la région E4 (ORF6 ou ORF3 par exemple), comme décrit dans les demandes W095/02697 et W096/22378, incorporées à la présente par référence. Concernant les adénovirus dépourvus en plus des fonctions tardives (vecteur "minimum") ou de l'ensemble des régions codantes (vecteur "gutless"), leur construction a été décrite par exemple par Parks et al. PNAS 93 (1996) p. 13565 et Lieber et al., J. Virol. 70 (1996) p. 8944. Les éléments génétiques rétroviraux peuvent être insérés en différents sites du génome adénoviral recombinant. Ils peuvent être insérés au niveau de la région El, E3 ou E4, en remplacement des séquences délétées ou en surplus. Ils peuvent également être insérés en tout autre site, en dehors des séquences nécessaires en cis à la production des virus (séquences ITR et séquence d'encapsidation). Par ailleurs, les adénovirus recombinants peuvent être d'origine humaine ou animale. Concernant les adénovirus d'origine humaine, on peut citer préférentiellement ceux classés dans le groupe C, en particulier les adénovirus de type 2 (Ad2), 5 (Ad5); ou les adénovirus 7 (Ad7) ou 12 (Adl12). Parmi les différents adénovirus d'origine animale, on peut citer préférentiellement les adénovirus d'origine canine, et notamment toutes les souches des adénovirus CAV2 [souche manhattan ou A26/61 (ATCC VR- 800) par exemple]. D'autres adénovirus d'origine animale sont cités notamment dans la demande WO94/26914 incorporée à la présente par référence. Les adénovirus recombinants sont produits dans une lignée d'encapsidation, c'est-à-dire une lignée de cellules capables de complémenter en trans une ou plusieurs des fonctions déficientes dans le génome adénoviral recombinant. Parmi les lignées d'encapsidation connues par l'homme du métier, on peut citer par exemple la lignée 293 dans laquelle une partie du génome de l'adénovirus a été intégrée. Plus précisément, la lignée 293 est une lignee de cellules embryonnaires humaines de rein contenant l'extrémité gauche (environ 11-12 %) du génome de l'adénovirus sérotype 5 (Ad5), comprenant l'ITR gauche, la région d'encapsidation, la région El, incluant Ela et Elb, la région codant pour la protéine plX et une partie de la région codant pour la protéine plVa2. Cette lignée est capable de trans-complémenter des adénovirus recombinants défectifs pour la région El, c'est-à-dire dépourvus de tout ou partie de la région El, et de produire des stocks viraux ayant des titres élevés. Cette lignée est également capable de produire, à température permissive (32 C), des stocks de virus comportant en outre la mutation E2 thermosensible. D'autres lignées cellulaires capables de complémenter la région E1 ont été décrites, basées notamment sur des cellules de carcinome de poumon humain A549 (WO94/28152) ou sur des rétinoblastes humains (Hum. Gen. Ther. (1996) 215). Par ailleurs, des lignées capables de trans-complémenter plusieurs fonctions de l'adénovirus ont également été décrites. En particulier, on peut citer des lignées complémentant les régions E1 et E4 (Yeh et al., J. Virol. Vol. 70 (1996) pp 559-565; Cancer Gen. Ther. 2 (1995) 322; Krougliak et al., Hum. Gen. Ther. 6 (1995) 1575) et des lignées complémentant les régions E1 et E2 (WO94/28152, W095/02697, WO95/27071) ou des lignées dérivées de celles-ci utilisables pour produire des adénovirus minimum, en 1 3 2778670 particulier parce qu'elles expriment en outre une activité de recombinase site- spécifique impliquée dans la construction de tels virus. Les adénovirus recombinants sont habituellement produits par introduction de l'ADN viral dans la lignée d'encapsidation, suivie d'une lyse des cellules après environ 2 ou 3 jours (la cinétique du cycle adénoviral étant de 24 à 36 heures). Pour la mise en oeuvre du procédé, I'ADN viral introduit peut être le génome viral recombinant complet, éventuellement construit dans une bactérie (W096/25506) ou dans une levure (W095/03400), transfecté dans les cellules. Il peut également s'agir d'un virus recombinant utilisé pour infecter la lignée d'encapsidation. L'ADN viral peut aussi être introduit sous forme de fragments portant chacun une partie du génome viral recombinant et une zone d'homologie permettant, après introduction dans la cellule d'encapsidation, de reconstituer le génome viral recombinant par recombinaison homologue entre les différents fragments. Après la lyse des cellules, les particules virales recombinantes peuvent être isolées par toute technique connue telle que la centrifugation en gradient de chlorure de césium ou la chromatographie. Une méthode alternative a été notamment décrite dans la demande FR 9608164 incorporée à la présente par référence. Les compositions selon l'invention peuvent comprendre des quantités variables d'adénovirus recombinants, aisément adaptables par l'homme du métier en fonction des applications envisagées (in vitro, ex vivo ou in vivo, par exemple). Généralement, les compositions comprennent de l'ordre de 105 à 1015 p.v. de chaque adénovirus recombinant, de préférence de 107 à 1012 p.v. Le terme p.v. correspond au nombre de particules virales présentes dans les compositions. 14 2778670 Par ailleurs, les compositions de l'invention peuvent se présenter sous différentes formes, telles que solutions, gels, poudre, etc. Elles sont généralement sous forme de solutions, préférentiellement stériles, telles que par exemple des solutions salines (phosphate monosodique, disodique, chlorure de sodium, potassium, calcium ou magnésium, etc, ou des mélanges de tels sels), isotoniques, ou de compositions sèches, notamment lyophilisées, qui, par addition selon le cas d'eau stérilisée ou de sérum physiologique, permettent la constitution de solutés. D'autres excipients peuvent être utilisés tels que par exemple un hydrogel. Cet hydrogel peut être préparé à partir de tout polymère (homo ou hétéro) bio-compatible et non cytotoxique. De tels polymères ont par exemple été décrits dans la demande W093/08845. En outre, les compositions selon l'invention peuvent être conditionnées dans tout type de dispositif adapté, tel que flacon, tube, ampoule, poche, seringue, ballonet, etc. D'autre part, dans les compositions de l'invention comprenant au moins deux types d'adénovirus recombinants, ceux-ci peuvent être conditionnés soit en mélange, soit séparément. Comme indiqué ci-avant, les compositions de l'invention peuvent être utilisées in vitro, ex vivo ou in vivo. Pour une utilisation in vitro ou ex vivo, les cellules peuvent être simplement incubées, dans tout dispositif approprié (plaque, boîte, poche, etc.) en présence d'une composition telle que décrite ci-avant. Comme illustré sur la Figure 1 pour une composition comprenant deux types d'adénovirus recombinants, I'incubation des cellules entraîne l'infection des cellules par les deux adénovirus, qui permettent ensuite à la celluleco-infectée de produire des particules rétrovirales infectieuses. Pour ce type d'application, les compositions peuvent être utilisées à des multiplicités d'infection (MOI) comprises entre 10 et 5000 p.v. par cellule, par exemple, de préférence entre 100 et 2000, comme illustré notamment dans les exemples. A cet égard, I'invention concerne également un procédé de production de particules rétrovirales in vitro comprenant l'incubation de cellules en présence d'une composition telle que définie ci-avant, éventuellement suivie de la récupération et/ou purification des rétrovirus produits. Les cellules utilisables dans ce procédé peuvent être tout type de cellule permissive aux adénovirus. Il peut s'agir de cultures primaires ou de lignées cellulaires, notamment mammifère, et notamment d'origine humaine. L'utilisation de cellules d'origine humaine (cellules de reins embryonnaires, A549, rétinoblastes, Hela, KB, etc.) est particulièrement avantageuse car elle permet de conférer une meilleure résistance des particules rétrovirales au système du complément. Comme illustré dans les exemples, le procédé de l'invention permet d'obtenir des titres élevés de rétrovirus, sans recours à des lignées d'encapsidation. Pour une utilisation in vivo, les compositions de l'invention peuvent être formulées en vue d'une administration par voie topique, orale, parentérale, intranasale, intraveineuse, intramusculaire, sous-cutanée, intraoculaire, transdermique, intratumorale, etc. A cet égard, I'invention concerne également une méthode pour le transfert d'un acide nucléique in vivo comprenant l'administration d'une composition telle que décrite ci-avant. L'invention peut être utilisée par exemple chez l'animal, pour la création de modèles pathologiques, ou l'étude de la régulation de gènes, ou également chez l'homme, dans des études de marquage, de biodisponibilité, ou à des fins médicales. L'invention concerne également l'utilisation des compositions décrites ci-avant pour la production de particules rétrovirales infectieuses in vivo. Selon l'acide nucléique d'intérêt (transgène) inséré dans le vecteur rétroviral, la présente invention peut être utilisée dans de nombreuses applications. Ainsi, parmi les produits d'intérêt au sens de la présente invention, on peut citer plus particulièrement les enzymes, les dérivés sanguins, les hormones telles que l'hormone de croissance, les cytokines, les lymphokines: 16;2778670 interleukines, interférons, TNF, etc. (Brevet francçais n 92 03120), les facteurs de croissance, par exemples les facteurs angiogéniques tels que les VEGF ou FGF, les neurotransmetteurs ou leurs précurseurs ou enzymes de synthèse, les facteurs trophiques, en particulier neurotrophiques pour le traitement des maladies neurodégénératives, des traumatismes ayant endommagé le système nerveux, ou des dégénérescences rétiniennes: BDNF, CNTF, NGF, IGF, GMF aFGF, NT3, NT5, HARP/pléiotrophine, ou les facteurs de croissance osseuse, les facteurs hématopolétiques, etc., la dystrophine ou une minidystrophine (brevet français n 91 11947), les gènes codant pour des facteurs impliqués dans la coagulation: facteurs VII, VIII, IX, les gènes suicides (thymidine kinase, cytosine déaminase), les protéines impliquées dans le cycle cellulaire comme p21, ou autres protéines inhibitrices des kinases dépendantes, Rb, Gas-1, Gas- 6, Gas-3, Gad 45, Gad 153, les cyclines A, B, D, ou encore la protéine GAX limitant la prolifération des cellules dans les muscles lisses (traitement de la resténose), les protéines induisant l'apoptose ou d'autres suppresseurs de tumeurs comme p53, Bax, BclX-s, Bad ou tout autre antagoniste de Bc12 et de BclX-1, les gènes de l'hémoglobine ou d'autres transporteurs protéiques, les gènes correspondant aux protéines impliquées dans le métabolisme des lipides, de type apolipoprotéine choisie parmi les apolipoprotéines A-l, A-Il, A-IV, B, C-I, C-Il, C- Ill, D, E, F, G, H, J et apo(a), les enzymes du métabolisme comme par exemple la lipoprotéine lipase, la lipase hépatique, la lécithine cholestérol acyltransférase, la 7 alpha cholestérol hydroxylase, la phosphatidyl acide phosphatase, ou encore des protéines de transfert de lipides comme la protéine de transfert des esters de cholestérol et la protéine de transfert des phospholipides, une protéine de liaison des HDL ou encore un récepteur choisi parmi les récepteurs aux LDL, les récepteurs des chylomicrons-remnants et les récepteurs scavenger, etc. Parmi les produits d'intérêt il est important de souligner les anticorps, les fragments variables d'anticorps simple chaîne (ScFv) ou tout autre fragment d'anticorps possédant des capacités de reconnaissance pour son utilisation en immunothérapie, par exemple pour le traitement des maladies infectieuses, des tumeurs (anticorps anti-RAS, anti-p53 ou anti- GAP), des maladies autoimmunes telles que la sclérose en plaques (anticorps antiidiotype). D'autres protéines d'intérêt sont, de façon non limitative, des récepteurs solubles, comme par exemple le récepteur CD4 soluble ou le récepteur soluble du TNF pour la thérapie anti-HIV, le récepteur soluble de l'acétylcholine pour le traitement de la myasthénie; des peptides substrats ou inhibiteurs d'enzymes, ou bien des peptides agonistes ou antagonistes de récepteurs ou de protéines d'adhésion comme par exemple pour le traitement de I'asthme, de la thrombose et de la resténose: des protéines artificielles, chimériques ou tronquées. Parmi les hormones d'intérêt essentiel, on peut citer l'insuline dans le cas du diabète, I'hormone de croissance et la calcitonine. L'acide nucléique peut également être un gène ou une séquence antisens, dont l'expression dans la cellule cible permet de contrôler l'expression de gènes ou la transcription d'ARNm cellulaires. De telles séquences peuvent, par exemple, être transcrites dans la cellule cible en ARN complémentaire d'ARNm cellulaires et bloquer ainsi leur traduction en protéine, selon la technique décrite dans le brevet européen n 140 308. Les gènes thérapeutiques comprennent également les séquences codant pour des ribozymes, qui sont capables de détruire sélectivement des ARN cibles (brevet européen n 321 201). L'acide nucléique peut également comporter un ou plusieurs gènes codant pour un peptide antigénique, capable de générer chez l'homme ou l'animal une réponse immunitaire. Dans ce mode particulier de mise en oeuvre, I'invention permet donc la réalisation soit de vaccins, soit de traitements immunothérapeutiques appliqués à l'homme ou à l'animal, notamment contre des microorganismes, des virus ou des cancers. Il peut s'agir notamment de peptides antigèniques spécifiques du virus d'Epstein Barr, du virus HIV, du virus de l'hépatite B (brevet Européen N 185 573), du virus de la pseudo-rage, du 18; d2778670 "syncitia forming virus", d'autres virus ou encore d'antigènes spécifiques de tumeurs comme les protéines MAGE (brevet Européen n 259 212). L'acide nucléique peut également coder pour un produit toxique pour les cellules, notamment une toxicité conditionnelle (i.e., thymidine kinase, cytosine désaminase, etc.). D'autres gènes présentant un intérêt ont été notamment décrits par Mc Kusick, V.A. Mendelian (Inheritance in man, catalogs of autosomal dominant, autosomal recessive, and X-linked phenotypes, Eighth edition. John Hopkins University Press (1988)), et dans Standbury, J. B. et ai. (The metabolic basis of inherited disease, Fifth edition. McGraw-Hill (1983)). Les gènes d'intérêt recouvrent les protéines impliquées dans le métabolisme des acides aminés, des lipides et des autres constituants de la cellule. Enfin, I'acide nucléique peut comporter plusieurs régions codantes, éventuellement séparées par une IRES, permettant la production de plusieurs produits d'intérêt. Par ailleurs, le transgène comporte généralement un promoteur transcriptionnel (situé en 5') et un terminateur transcriptionnel (situé en 3'), qui peuvent être choisis par l'homme du métier, comme décrit ciavant. D'autre part, le transgène peut être présent dans le vecteur rétroviral dans l'orientation identique ou opposée au sens de la transcription des LTR. Enfin, dans un mode particulier de mise en oeuvre, les génomes adénoviraux de l'invention peuvent également être délivrées aux cellules sous forme plasmidique, en combinaison avec les fonctions de complémentation adénovirales. D'autres avantages et applications de la présente invention apparaîtront à la lecture des exemples qui suivent, qui doivent être considérés comme illustratifs et non limitatifs. LEGENDES DES FIGURES FIGURE 1: Schéma général de l'utilisation d'une composition selon l'invention comprenant deux vecteurs chimériques rétro/adénoviraux = Ad étrovirus. FIGURE 2: Représentation des cassettes d'expression des fonctions de complémentation rétrovirales (2B, 2C) et du vecteur rétroviral (2A). FIGURE 3: Représentation du plasmide navette pAdEGP. E./P. EF- 1 l: Enhancer / Promoteur du gène EF-1 a; pA: site de polyadénylation. FIGURE 4: Représentation du plasmide navette pAd CLTKEE. FIGURE 5: Mécanisme de production de particules rétrovirales infectieuses au moyen d'une composition de l'invention. FIGURE 6: Cinétique de production de particules rétrovirales après co-infection de cellules W162 avec Ad TK/ENV et Ad GAG/POL. FIGURE 7: Production de particules rétrovirales dans les cellules W162, en fonction de la MOI de l'infection adénovirale. FIGURE 8: Quantification par Slot-Blot des ARNs TK+ encapsidés dans les particules virales. FIGURE 9: Schéma de détection, par PCR et coupure enzymatique, de la présence d'une cassette rétrovirale TK intégrée. FIGURE 10: Schéma de détection, par PCR et coupure enzymatique, de la présence d'une cassette rétrovirale TK intégrée. FIGURE 11: Mise en évidence de la sensibilité au gancyclovir des cellules infectées par les rétrovirus produits, comprenant le gène TK. Techniques générales de biologie moléculaire Les méthodes classiquement utilisées en biologie moléculaire telles que les extractions préparatives d'ADN plasmidique, la centrifugation d'ADN plasmidique en gradient de chlorure de césium, I'électrophorèse sur gels d'agarose, la purification de fragments d'ADN, les extractions de protéines au phénol-chloroforme, la précipitation d'ADN en milieu salin par de l'éthanol ou de l'isopropanol, la transformation dans Escherichia coli, etc... sont bien connues de l'homme de métier et son abondamment décrites dans la littérature [Maniatis T. et ai., "Molecular Cloning, a Laboratory Manual", Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, N.Y., 1982; Ausubel F.M. et al. (eds), "Current Protocols in Molecular Biology", John Wiley & Sons, N.Y. 1987]. Pour les ligatures, les fragments d'ADN peuvent être séparés selon leur taille par électrophorèse en gels d'agarose, purifiés en utilisant le kit "QlAquick Gel Extraction Kit" distribué par Qiagen puis incubés en présence de I'ADN ligase du phage T4 (Biolabs) selon les recommandations du fournisseur. La déphosphorylation des extrémités 5' de l'ADN peut être effectuée par la phosphatase alkaline (Boeringer Mannheim) selon les spécifications du fournisseur. Le remplissage des extrémités 5' proéminentes peut être effectué par le fragment de Klenow de l'ADN polymérase I d'E. coli (Biolabs) selon les recommandations du fabricant. La mutagénèse dirigée in vitro par oligodéoxynucléotides synthétiques peut être effectuée selon la méthode développée par Mikaelian and Sergeant [Nucleic Acids Research, 1992, 20: 376]. L'amplification de fragments d'ADN par la technique dite de PCR [Polymerase-catalysed Chain Reaction, Saiki R.K. et al., 1985, Science 23: 1350-1354] peut être effectuée en utilisant l'ADN polymérase Pfu (Stratagène) selon les spécifications du fabricant. La vérification des séquences nucléotidiques peut être effectuée par la méthode développée par Sanger et al. [Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1977, 74: 5463-5467]. Exemple 1. Construction de 3 plasmides portant différentes unités rétrovirales sous contrôle d'un promoteur Cet exemple décrit la construction de 3 plasmides contenant, respectivement, les cassettes d'expression (i) de l'enveloppe rétrovirale 4070A, (ii) des protéines gag-pol du virus MoMLV et (iii) du gène tk d'HSV-1 placé dans un contexte rétroviral. 1.1. Construction du plasmide pEFla-Env Le fragment Hind3/Xbal contenant le promoteur/enhancer du gène EF-la issu du plasmide pEF-BOS [Mizushima and Nagata, 1990, Nucl. Acids Res. 18: 5322] est cloné dans les sites Hind3 et Xbal du plasmide commercial pSI (Promega) pour générer le plasmide pSI-EFI a. Un fragment Xbal/Notl contenant le gène de l'enveloppe du virus MLV amphotrope 4070A (env 4070A) est amplifié par PCR en utilisant le plasmide pSV-envAM (don de T. Heidmann, CNRS URA 147) comme matrice et les oligonucléotides SEQ ID N 1 et SEQ ID N 2 décrits ci-dessous. SEQ ID N 1 ' - GGCTCTAGAGCCGCCACCATGGCGCGTTCAACGCTC-3' Le site Xbal est en italique, la séquence consensus Kozak d'initiation de la traduction est en gras. SEQ ID N 2 '-AAAAAAAAGCGGCCGCTTATCATGGCTCGTACTCTATGG-3' Le site Not1 est en italique, les deux codons Stop sont en gras. Au cours de cette amplification, une réaction PCR intermédiaire avec les oligonucléotides SEQ ID N 3 et SEQ ID N 4 a permis d'éliminer le site Pacl présent dans le gène env sans modifier la séquence d'acides aminés. SEQ ID N 3 '-CAG G CATGGAGTCAAAACCAGAGCCTGGAC-3' SEQ ID N 4 '-CACTGCCTTAATCAAAACCCAGCAG-3' Le site Pacl modifié est en gras. Le fragment Xbal/Notl amplifié, contenant le gène env 4070A, est cloné dans les sites Xbal et Not1 de pSI-EF1a pour générer le plasmide pEFla- Env qui contient donc le gène env4070A placé sous le contrôle du promoteur EF- la et suivi du signal de polyadénylation tardif du virus SV40. La cassette Env portée par ce plasmide est représentée sur la Figure 2B. 1.2. Construction du plasmide pEFla-GP+ Le fragment Xmal/Xmal de pMOV3ACla (don de T. Heidmann, CNRS URA 147) contenant le cistron gag et une partie du cistron pol du virus MLV de souche Moloney est cloné dans le site Xmal de pSI-EFla (voir paragraphe 1.1.) pour générer le plasmide pEFla-GP. Un fragment EcoR1/BsrG1 contenant la partie 5' du cistron gag est amplifié par PCR en utilisant le plasmide pMOV-3ACla comme matrice avec les oligonucléotides SEQ ID N 5 et SEQ ID N 6 décrits ci-dessous. SEQ ID No 5 5'-CCG GAA TTCGCCGCCACCATGGGCCAGACTGTTACC-3' Le site EcoR1 est en italique, la séquence consensus Kozak d'initiation de la traduction est en gras. SEQ ID N 6 '-GGAGGCGGAGGCTTAGGGTG-3'. Le fragment EcoR1/BsrGl amplifié est clone dans les sites EcoR1 et BsrG1 de pEFla-GP pour générer le plasmide pEFla-GPaug. Un fragment Xmal/Notl contenant la partie 3' du cistron pol est amplifié par PCR en utilisant le plasmide pMOV-3ACla comme matrice avec les oligonucléotides SEQ ID N 7 et SEQ ID N 8 décrits ci-dessous. SEQ ID N 7 '-GTAGACGGCATCGCAGCTTG-3' SEQ ID N 8 5'-AAAAAAAAGCGGCCGCTCATTAGGGGGCCTCGCGGG-3' Le site Not1 est en italique, les codons Stop sont en gras. Le fragment Xmal/Notl amplifié est cloné dans les sites Xmal et Not1 de pEFla-GPaug et génère le plasmide pEFla-GP+ qui contient donc le cistron gag-pol placé sous le contrôle du promoteur EF-la et suivi du signal de polyadénylation tardif du virus SV40. La cassette GAG/POL portée par ce plasmide est représentée sur la Figure 2C. 1.3. Construction du plasmide pCLTKRpA Le fragment BstY1/Narl de pXL3022, contenant le gène tk d'HSV-1 et son leader, est cloné dans les sites Bc11 et Clal (sites compatibles) du vecteur rétroviral pLNCX [Miller and Rosman, 1989, Biotechniques 7: 980-990] pour générer pLTK. Les fragments Sacl/Sacl et Sacl/Nhel de pLTK sont clonés dans les sites Sac1 et Nhel du plasmide commercial pCl (Promega), contenant le promoteur/enhancer hCMV-IE (-733/-14), pour générer pCLTK. Un fragment Nhe1/Notl contenant les 3/4 de la séquence U3 et la séquence R, est amplifié par PCR en utilisant le plasmide pLNCX comme matrice avec les oligonucléotides SEQ ID N 9 et SEQ ID N 10 décrits ci-dessous SEQ ID N 9 5'-GACCCCACCTGTAGGTTTGGC-3' SEQ ID N 10 '-AAAAAAAAGCGGCCGCTGCAACTGCAAGAGGG-3' Le site Not1 est en italique. Le fragment Nhel/Notl amplifié est cloné dans les sites Nhel et Not1 de pCLTK pour générer pCLTKR. Un fragment Notl/BamH1 contenant le signal de polyadénylation du gène bgh (bovine growth hormone) est amplifié par PCR en utilisant le plasmide commercial pcDNA3 (Invitrogen) comme matrice avec les oligonucléotides SEQ ID N 1 et SEQ ID N 12 décrits ci-dessous. SEQ ID N 11 5'-AAAAAAAAGCGGCCGCTAAATGCTAGAGCTCGCTG-3' Le site Not1 est indiqué en italique SEQ ID N 12 '-CGCGGA TCCCCACCGCATCCCCAGC-3' Le site BamH1 est indiqué en italique. Le fragment Notl/BamH1 amplifié est clone dans les sites Not1 et BamH1 de pCLTKR et génère pCLTKRpA qui contient donc le gène tk dans un contexte de vecteur rétroviral. Dans le LTR 5', la séquence U3 est remplacée par le promoteur/enhancer hCMV-IE. Il est décrit que ce LTR hybride (hCMV-R-U5) est fonctionnel [Naviaux et ai., 1996, J. Virol. 70: 5701-5705]. Dans le LTR 3', la séquence U5 a été éliminée et remplacée par le signal de polyadénylation du * gène bgh. La structure de la cassette obtenue est représentée sur la Figure 2A. Exemple 2. Construction de deux plasmides "navettes" portant différentes unités rétrovirales en vue de la technologie E. coli Cet exemple décrit la construction de deux plasmides dits "navettes" qui seront utilisés pour la construction de deux adénovirus recombinants par la technologie E.coli (voir exemple 3). Ils contiennent les cassettes d'expression TK et Env (pAdCLTKEE), et Gag-Pol (pAdEGP). (Figure 3) 2.1. Construction du plasmide "navette" pAdEGP (Figure 3) Le fragment Fsp1/Fsp1 de pEFla-GP+, contenant le cistron gag-pol sous le contrôle du promoteur EF-la (voir paragraphe 1.2.), est cloné dans le site EcoRV déphosphorylé de pXL3048 (plasmide porteur des gènes de sélection Kana et SacB pour générer le plasmide pAdEGP qui contient ainsi les séquences 1-382 et 3446-4296 de l'adénovirus de type 5 respectivement en 5' et 3' de la cassette d'expression Gag-Pol. 2.2. Construction du plasmide "navette" pAdCLTKEE (Figure 4) Le fragment Bgl2/BamH1 de pCLTKRpA contenant la cassette TK dans un contexte rétroviral (voir paragraphe 1.3.) est cloné dans le site BamH1 de pXL3048 (plasmide porteur des gènes de sélection Kana et SacB; RPR- Gencell) pour générer le plasmide pAdCLTK. Le fragment Avr2/Earl (traité Klenow) de pEFla-Env contenant la cassette d'expression Env (voir paragraphe 1.1.) est cloné dans le site Sali (traité par la phosphatase alcaline puis Klenow) de pAdCLTK pour générer le plasmide pAdCLTKEE qui contient ainsi les séquences 1-382 et 3446- 4296 de I'adénovirus de type 5 respectivement en 5' et 3' de la cassette d'expression TK- Env. La cassette d'expression Env4070A, localisée en 3' de la cassette d'expression TK, est transcrite dans le sens opposé. Exemple 3. Construction de 2 vecteurs adÈnoviraux recombinants El E31IE4portant différentes unités rétrovirales Cet exemple décrit la construction de deux vecteurs adénoviraux recombinants E1-/E3-/E4- contenant respectivement les cassettes d'expression TK-Env (AdTK/ENV) et Gag-Pol (AdGAG/POL) par la technologie de double recombinaison dans E. coli. 3.1. Technologie E.coli La technologie E. coli permet la construction d'un génome adénoviral recombinant infectieux a partir d'un génome d'adénovirus 5 modifié et d'un plasmide "navette" (contenant la cassette à intégrer dans le génome adénoviral), après deux recombinaisons homologues successives dans une souche mutante polA d'E. coli. La technique utilisée a été largement décrite par Crouzet et ai. [1997, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 94: 1414-1419]. 3.2. Construction des génomes recombinants AdGAG/POL et AdTK/ENV Le génome adénoviral de type 5, utilisé pour la technologie E. coli, est cloné dans le plasmide pXL2811 (Crouzet et al. précité). Ce génome, localisé dans un fragment Pacl, présente des délétions dans la région E1 (AE1: délétion Hinfl-Bgl2 382-3328), E3 (AE3: délétion Xbal 28592-30470) et E4 (AE4: délétion Sspl-Smal 33423-35356). Le génome adénoviral recombinant AdGAG/POL est construit après recombinaisons homologues dans E. coli entre le plasmide "navette" pAdEGP (voir paragraphe 2.1.) et pXL2811. La cassette d'expression Gag- Pol est localisée dans la délétion El. Le génome adénoviral recombinant AdTK/ENV est construit après recombinaisons homologues dans E. coli entre le plasmide "navette" pAdCLTKEE (voir paragraphe 2.2.) et pXL2811. La cassette d'expression TK- Env est localisée dans la délétion El. Les 2 préparations d'ADNs recombinants sont analysées par digestions enzymatiques puis électrophorèse sur gel d'agarose 0,7%. Elles sont également séquencées (sites de clonages, séquences amplifiées par PCR... ). Le choix des enzymes de restriction permet d'étudier en particulier l'intégrité des trois cassettes d'expression TK, Env et Gag-Pol dans leur contexte adénoviral. Le nombre de bandes obtenues, la taille de ces bandes et les régions séquencées correspondent totalement aux profils attendus. Aucune délétion ni modification ne sont observées dans les 2 génomes. Ces résultats indiquent d'une part que les 2 génomes adénoviraux construits sont corrects et d'autre part que les séquences rétrovirales intégrées, dont les LTRs modifiées, ne génèrent pas de recombinaisons intemrnes lors de la construction dans E. coli assurant ainsi la stabilité génétique de l'ADN adénoviral. Exemple 4. Production et caractérisation des 2 préstocks viraux AdGAG/POL et AdTK/ENV Cet exemple décrit la production, la caractérisation et la titration des deux adénovirus recombinants AdTK/ENV et AdGAG/POL. 4.1. Production des adénovirus AdTK/ENV et AdGAG/POL Les ADNs AdTK/ENV et AdGAG/POL (20 pg) sont digérés par Pacl, afin de libérer le fragment Pacl contenant strictement le génome adénoviral recombinant, puis sont précipités par de l'éthanol. Chacun des deux ADNs est transfecté avec de la LipofectAMINE (GibcoBRL), selon les indications du fournisseur, dans une lignée cellulaire 293 trans- complémentantes pour les protéines adénovirales E1 et E4 [cellules IGRP2; Yeh et al., 1996, J. Virol. 7E: 559-565]. Les cellules sont maintenues en culture jusqu'à l'apparition d'un effet cytopathique (cellules décollées). A cette date, le surnageant est prélevé puis congelé/décongelé 3 fois avant d'être utilisé pour infecter de nouvelles cellules IGRP2. Ainsi, les deux adénovirus recombinants sont amplifiés successivement en plaque de culture 12 puits (ampli. 1), plaque de culture 6 puits (ampli. 2) et boites de culture de 10 cm de diamètre (ampli. 3 et 4). Pour chacun des virus, le préstock final d'environ 150 ml est prélevé sur 35 boites de 10 cm (ampli. 4). Il est également congelé/décongelé 3 fois puis conservé à -20 0C. 4.2. Caractérisation de la stabilité génétique des virus AdTK/ENV et AdGAG/POL Il s'agit de vérifier l'intégrité des génomes adénoviraux AdTK/ENV et AdGAG/POL après l'amplification des virus en culture de cellules. Un aliquot (2 ml) de chacun des deux préstocks est utilisé pour purifier l'ADN viral selon la méthode de Gluzman and Van Doren (1983, J. Virol. 45: 91- 103). L'ADN purifié est analysé par digestions enzymatiques puis électrophorèse sur gel d'agarose 0,7%. Le choix des enzymes de restriction permet d'étudier en particulier l'intégrité des trois cassettes d'expression TK, Env et Gag-Pol dans leur contexte adénoviral. Le nombre de bandes obtenues et la taille de ces bandes correspondent totalement aux profils attendus. Aucune délétion n'est observée dans les 2 génomes. Ces résultats indiquent que les séquences rétrovirales intégrées dans les deux génomes adénoviraux n'altèrent pas la stabilité génétique de ces génomes. 4.3. Titration des préstocks adénoviraux AdTK/ENV et AdGAG/POL Les deux préstocks viraux obtenus ont été titrés selon deux méthodes: (i) immuno-titration avec un anticorps monoclonal anti-penton et (ii) High- Pressure Liquid Chomatography ou HPLC (F. Blanche, RPR-Gencell), afin d'estimer en particulier la productivité de chacun des virus. Pour l'immuno-titration, des cellules IGRP2 cultivées en plaque de 6 puits sont infectées avec des dilutions du préstock viral. Quarante huit heures après l'infection, les cellules sont fixées avec du méthanol 90% puis incubées 1 heure en présence de PBS/5% SBF (sérum bovin foetal) pour saturation. Les cellules sont ensuite incubées avec un anticorps monoclonal anti-penton (Biodesign International) dilué au 1/100, lavées puis marquées avec un anticorps lié à la peroxydase dilué au 1/500 (Amersham). Les cellules marquées sont révélées en présence de 3,3'-Diaminobenzidine (DAB)/H202. Le nombre de particules infectieuses (PI) évalué par immuno-titration est de 5,8 x 108 PI/ml pour AdTK/ENV et de 3,3 x 108 PI/ml pour AdGAG/POL. Le nombre de particules virales (PV) déterminé par HPLC est de 1,9 x 1010 PV/ml pour AdTK/ENV et de 1,3 x 1010 PV/ml pour AdGAG/POL. Le rapport PV/PI est de 33 (AdTK/ENV) et de 39 (AdGAG/POL). Les titres viraux obtenus démontrent que les deux préstocks AdGAG/POL et AdTK/ENV ont une bonne productivité. Celle-ci est comparable à la productivité d'autres adénovirus recombinants défectifs pour E1 et E4. Ces données impliquent, en particulier, que la présence de séquences rétrovirales et de leurs fonctions n'interfèrent pas avec les séquences adénovirales et leurs fonctions dans la productivité des virus. Exemple 5. Fonctionnalité des cassettes d'expression rétrovirales présentes dans les adénovirus AdTK/ENV et AdGAG/POL Cet exemple décrit l'étude de la fonctionnalité de la cassette d'expression TK présente dans l'adénovirus AdTK/ENV et de la cassette d'expression Gag-Pol présente dans AdGAG/POL. La fonctionnalité de la cassette d'expression Env sera testée par l'intermédiaire de la titration des rétrovirus recombinants produits (voir paragraphe 6.4.). 5.1. Fonctionnalité de la cassette d'expression TK La fonctionnalité de la cassette d'expression est analysée de 3 manières: (i) quantification des ARNs TK+, (ii) mise en évidence de la protéine TK dans le lysat cellulaire et (iii) marquage fluorimétrique des cellules exprimant la protéine TK. Des cellules infectées avec AdGAG/POL et un adénovirus recombinant exprimant le gène tk constituent, respectivement, un témoin négatif et un témoin positif pour chacun des essais. Quarante huit heures après l'infection de cellules W162 (cellules dérivées de cellules Vero, issues du rein de singe vert) avec AdTK/ENV (moi 10 à 837 PI), les ARNs totaux sont extraits avec le kit RNeasy (Qiagen) selon les indications du fournisseur. Les ARNs (15 pg) sont déposés sur une membrane nylon puis hybrides avec une sonde TK radioactive selon les protocoles décrits par Maniatis T. et ai. ["Molecular Cloning, aLaboratory Manual", Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, N.Y., 1982]. Cette analyse permet de quantifier spécifiquement les ARNs TK+. Des cellules W162 infectées avec AdTK/ENV sont récoltées 48 heures p.i. puis lysées afin de révéler par test ELISA la présence de la protéine TK. Des cellules W162 infectées avec AdTK/ENV (moi 50 à 200 PI) sont récoltées 48 heures p.i. fixées 30 min avec du formaldehyde 4% puis lysées 10 min avec du triton 0,2%. Les cellules sont ensuite incubées avec un anticorps IgG lapin anti-TK (pAbTK41, RPR-Gencell) dilué au 1/250, lavées (tampon Power-Block 1X, Biogenex) puis marquées avec un anticorps anti-lgG lapin couplé FITC dilué au 1/250 (Jackson ImmunoResearch Laboratories). Les cellules marquées sont analysées par cytométrie de flux (FACS). Les résultats indiquent que des ARNs TK+ sont transcrits. La quantité de ces ARNs TK+ transcrits est proportionnelle à la moi de l'infection adénovirale AdTK/ENV. La protéine TK est détectée dans le lysat de cellules infectées et 70 à 90 % des cellules infectées (selon la moi) sont marquées positivement. L'ensemble de ces données indiquent clairement que la cassette d'expression TK est fonctionnelle tant sur le plan transcriptionnel que traductionnel. 5.2. Fonctionnalité de la cassette d'expression Gag-Pol La fonctionnalité de la cassette d'expression est étudiée en recherchant la présence de l'activité reverse-transcriptase, codée par le cistron pot, dans le surnageant de cellules W162 infectées avec AdGAG/POL. Dans le surnageant de culture, l'enzyme reverse-transcriptase (RT) est présente dans la particule rétrovirale dont les constituants sont codés par le cistron gag. La présence d'une activité reverse- transcriptase démontre donc la présence de particules rétrovirales c'est à dire la présence des protéines gag. Des sumageants de cellules W162 infectées avec AdTK/ENV et de cellules GP+envAM12 (lignée murine productrice de particules rétrovirales; [Markowitz et ai., 1988, Virology 167: 400406]) constituent, respectivement, un témoin négatif et un témoin positif pour l'essai. Un aliquot (30 pil) de sumrnageant de cellules W162 infectées avec AdGAG/POL (moi 10 à 500 PI) est prélevé 48, 72 et 96 heures p.i. et utilisé dans un test reverse-transcriptase (test RT) selon le protocole décrit par Goff et al. [1981, J. Virol. 38: 239-248]. Le test RT révèle la présence d'une activité reverse-transcriptase, donc de particules rétrovirales, dans le sumrnageant de cellules infectées par AdGAG/POL. La production de particules rétrovirales est maximale pour une moi d'environ 200 PI (résultats de 2 essais indépendants). Ces données indiquent clairement que la cassette d'expression Gag- Pol est fonctionnelle. Exemple 6. Production de particules rétrovirales recombinantes in vitro après co-infection adénovirale AdTKIENV-AdGAG/POL Cet exemple décrit l'utilisation de cellules infectées simultanément (co- infection) avec AdTK/ENV et AdGAG/POL pour la production de particules rétrovirales recombinantes infectieuses in vitro. Le schéma général de production des particules virales est présenté sur la Figure 5. 6.1. Co-infection adénovirale AdTK/ENV-AdGAG/POL Il s'agit de comparer l'activité reverse-transcriptase, c'est à dire la productivité virale, de sumageants de cellules W162 co-infectées avec AdGAG/POL et AdTK/ENV (moi 5/5 PI) et de cellules W162 infectées avec AdGAG/POL seul (moi 5 PI). Des surnageants de cellules W162 infectées avec AdTK/ENV et de cellules GP+envAM12 constituent, respectivement, un témoin négatif et un témoin positif pour l'essai. Un aliquot (30 pIl) de chaque sumrnageant est prélevé 48, 72 et 96 heures post-infection puis utilisé pour un test RT. Aucune différence de productivité n'est observée au cours du temps entre les cellules co-infectées et les cellules infectées avec AdGAG/POL seul démontrant qu'il n'y a aucune interférence entre les fonctions rétrovirales Gag- Pol et Env d'une part, et entre les fonctions adénovirales et rétrovirales d'autre part. 6.2. Cinétique de production des particules rétrovirales Il s'agit d'étudier la cinétique de production de particules rétrovirales après coinfection de cellules W162 avec AdTK/ENV et AdGAG/POL (moi 5/5 PI). Un aliquot (30 pl) de surnageant est prélevé régulièrement pendant 15 jours post-infection puis utilisé pour un test RT. Le milieu de culture est changé 24 heures avant chaque prélèvement. Les cellules infectées sont maintenues en culture pendant 15 jours sans passages. Les résultats obtenus sont présentés sur la Figure 6. Ils montrent que la production de particules rétrovirales augmente très rapidement entre 0 et 4 jours puis diminue progressivement entre 5 et 15 jours. Pendant les 7 premiers jours, le taux de production virale se situe entre 50 et 100%. L'apparition de plusieurs couches cellulaires après 1 semaine de culture peut amener à sous estimer la productivité virale: les virus transmis de cellules à cellules par fusion membranaire, sans être relargués dans le surnageant, ne sont pas détectés lors du test RT. La Figure 7 montre la production de particules rétrovirales dans les cellules W162, en fonction de la MOI de l'infection avec les adénovirus Ad TK/ENV et Ad GAG/POL. 6.3. Encapsidation des ARNs TK dans les particules rétrovirales Il s'agit de détecter et de quantifier les ARNs TK+ encapsidés dans les particules virales produites après co-infection de cellules W162 avec AdGAG/POL et AdTK/ENV à différentes moi. Les surnageants de culture sont prélevés 72 heures après l'infection puis l'ARN est extrait des particules rétrovirales selon la technique décrite par Murdoch et al. [1997, Gene Ther. 4: 744-749]. Les ARNs sont déposés sur une membrane nylon puis hybrides avec une sonde TK radioactive selon les protocoles décrits par Maniatis T. et a/. r'["Molecular Cloning, a Laboratory Manual", Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, N.Y., 1982]. Les résultats obtenus sont présentés sur la Figure 8 et démontrent la présence d'ARNs TK+ dans les particules virales produites. La quantité d'ARNs TK+ encapsidés est proportionnelle à la moi de la co-infection adénovirale. La présence d'ARN TK+ dans les particules rétrovirales signifie que le mécanisme d'encapsidation est fonctionnel et que les particules virales sont susceptibles de transmettre le génome recombinant dans les cellules infectées. 6.4. Titration des particules rétrovirales recombinantes infectieuses Il s'agit d'estimer la quantité de particules rétrovirales infectieuses produites après co-infection de cellules W1 62 avec AdGAG/POL et AdTK/ENV. Le surnageant des cellules co-infectées est prélevé 48 heures après l'infection. Des dilutions du surnageant sont déposées sur des cellules NIH3T3 (fibroblastes prélevés dans la queue de souris NIH). Le nombre de cellules NIH3T3 TK+ est déterminé par cytométrie de flux (FACS) 48 heures post- infection. Les cellules sont récoltées et fixées 30 min avec du formaldehyde 4% puis lysées 10 min avec du triton 0,2%. Les cellules sont incubées avec un anticorps IgG lapin anti-TK (pAbTK41) dilué au 1/250, lavées (tampon Power- Block 1X, Biogenex) puis marquées avec un anticorps anti-lgG lapin couplé biotine dilué au 1/250 (Sigma). Après lavage, les cellules sont incubées 1 heure avec de la streptavidine-FITC diluée au 1/500 (Amersham) puis analysées par cytométrie de flux. Le titre rétroviral moyen sur NIH3T3 est de 1,3 x 105 U.l.(unité infectieuse)/ml. Ce résultat indique ainsi que les rétrovirus recombinants produits sont fonctionnels c'est à dire infectieux et capables de transmettre la cassette d'expression TK à des cellules cibles. Le titre viral calculé démontre une productivité de particules rétrovirales infectieuses équivalente aux lignées cellulaires d'encapsidation actuellement disponibles. Exemple 7. Présence et expression à long-terme du transgène tk in vitro: Cet exemple a pour but de démontrer la présence et l'expression de la cassette rétrovirale TK dans des cultures à long-terme de cellules co-infectées avec AdTK/ENV et AdGAG/POL. Des cellules non infectées et des cellules 2778670 infectées par AdTK/ENV constituent des témoins. Deux types cellulaires ont été infectés: W162 et NIH3T3. 7.1. Présence d'une cassette rétrovirale TK intégrée dans le génome de cellules infectées in vitro Il s'agit de tester la présence de la cassette rétrovirale TK dans le génome de cellules mises en culture après co-infection avec AdTK/ENV et AdGAG/POL. Rappelons que le ciston gag-pol code notamment pour les protéines reverse-transcriptase (RT) et intégrase (IN) nécessaires pour la reverse-transcription puis l'intégration du génome rétroviral dans les cellules infectées. L'ADN génomique des cellules en culture est extrait (NIH3T3: J17 et J59 p.i.; W162: J52 et J94 p.i.) puis purifié avec le "QlAamp tissue kit" (Qiagen) selon les indications du fournisseur. L'ADN (2 pg) est utilisé comme matrice dans une réaction de PCR avec l'oligonucléotide SEQ ID N 13 correspondant à la séquence complémentaire de l'extrémité 5' de la région U3 et I'oligonucléotide SEQ ID N 14 correspondant à la séquence complémentaire de l'extrémité 3' du gène tk décrits ci-dessous. SEQ ID N 13 '-GCTAGCTTAAGTAACGCCATTTTGC-3' SEQ ID N014 '-GCGCCAGGTCGCATATCGTCGG-3' Ces oligonucléotides ont été choisis pour amplifier un fragment de 2610 nt qui peut être coupé (site EcoR1) en deux fragments de 1444 nt et 1166 nt (voir Figure 9). Ce fragment est visualisé par électrophorèse sur gel d'agarose 0,7%. 36 2778670 Pour toutes les dates testées, un fragment PCR ayant le profil attendu (taille + digestion EcoR1) est présent dans les cultures de cellules NIH3T3 et W162 co-infectées avec AdTK/ENV et AdGAG/POL. Il a été vérifié que ce fragment s'hybride spécifiquement avec une sonde complémentaire du gène tk (analyse par Southern-blot). Notons que dans notre essai, le signal est plus important dans les cellules NIH3T3. Aucun fragment n'est détecté dans les cultures de cellules non-infectées ou infectées seulement avec AdTK/ENV. Ces données démontrent que la cassette rétrovirale TK a été transmise via les rétrovirus recombinants produits à des cellules cultivées en présence de cellules co-infectées avec AdTK/ENV et AdGAG/POL. Les dates tardives retenues pour les tests et l'absence de signaux dans les cultures témoins permettent d'affirmer que la cassette TK est intégrée dans le génome des cellules. D'autre part, la présence de la séquence U3 en 5', caractérisée par la possibilité d'amplifier le fragment PCR, signifie que le processus de reverse- transcription est complet. La co-infection de cellules avec les vecteurs chimériques adéno- rétroviraux AdTK/ENV et Ad GAG/POL permet donc, contrairement à l'infection avec AdTK/ENV seul, I'intégration de la cassette d'expression TK, étape requise pour une expression à long terme de la protéine. Ces résultats ont été confirmés en utilisant le couple d'oligonucléotides SEQ 15 5'-GCTCGTCCGGGATTTGGAGACCC-3' (séquence complémentaire de l'extrémité 5' de la séquence d'encapsidation) et SEQ 14 (Figure 10). 7.2. Mesure de la cytotoxicité du gancyclovir (GCV) sur des cellules infectées en culture Il s'agit de tester la présence d'une protéine TK fonctionnelle dans des cellules mises en culture après co-infection avec AdTK/ENV et AdGAG/POL. Pour cela, les cellules sont incubées en présence de gancyclovir (GCV). Rappelons que la thymidine kinase d'HSV-1 transforme les analogues de nucléosides, comme le gancyclovir ou l'acyclovir, en molécules toxiques pour la division cellulaire car celles-ci inhibent la synthèse d'ADN. Les cellules NIH3T3 (J31 p.i.) et W162 (J69 p.i.) sont incubées en présence de gancyclovir (Roche) dans une gamme de concentrations adaptées (NIH3T3: 0,1, 1, 5 et 10 pM; W162: 1, 5, 10 et 100 pM) pendant 3 à 5 jours. Le nombre de cellules vivantes est déterminé avec le kit "CellTiter AQueous One Solution Cell Proliferation assay" (Promega) selon les indications du fournisseur. Les résultats obtenus sont présentés sur la Figure 11. Une sensibilité au gancyclovir des cellules est observée dans les cultures co-infectées avec AdTK/ENV et AdGAG/POL. En moyenne, 40% (NIH3T3) à 18% (W162) des cellules sont sensibles au GCV. Cette différence de sensibilité entre les deux types cellulaires peut être corrélée avec la quantité de fragment ADN TK+, amplifié par PCR, plus importante dans le cas les cellules NIH3T3 (voir paragraphe 7.2.). Notons que le nombre de cellules sensibles au gancyclovir peut être augmenté par l'effet bystander [Fick, J. et aL., 1995, Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 92:11071-110751.. Ces données démontrent que la cassette rétrovirale TK intégrée dans le génome des cellules, mises en culture après co-infection avec AdTK/ENV et AdGAG/POL, code pour une protéine TK fonctionnelle. La co-infection de cellules avec les vecteurs chimériques adéno-rétroviraux AdTK/ENV et Ad GAG/POL permet donc une expression à plus long-terme de la protéine TK que l'infection de cellules avec l'adénovirus AdTK/ENV seul. 38 2778670 REVENDICATIONS 1. Composition comprenant l'ensemble des éléments génétiques nécessaires à la constitution d'une particule rétrovirale, incorporés dans un ou plusieurs adénovirus recombinants défectifs pour tout ou partie des régions E1 et E4 au moins. 2. Composition selon la revendication 1, caractérisée en ce que les éléments génétiques comprennent un vecteur rétroviral et les acides nucléiques codant pour les fonctions de complémentation rétrovirales. 3. Composition selon la revendication 2, caractérisée en ce que les éléments génétiques comprennent: - un acide nucléique codant pour une protéine rétrovirale gag, - un acide nucléique codant pour une protéine rétrovirale pol, - un acide nucléique codant pour une protéine d'enveloppe, et - un acide nucléique comprenant, entre deux régions LTR, une séquence d'encapsidation rétrovirale et une séquence nucléique d'intérêt. 4. Composition selon l'une des revendications 1 à 3, caractérisée en ce que lesdits éléments génétiques sont incorporés dans un même adénovirus recombinant. 5. Composition selon l'une des revendications 1 a 3, caractérisée en ce que lesdits éléments génétiques sont répartis dans deux adénovirus recombinants. 6. Composition selon la revendication 5, caractérisée en ce qu'elle comprend: - un premier adénovirus recombinant comprenant, incorporé dans son génome, un ou plusieurs acides nucléiques codant pour les protéines rétrovirales gag et pol, et - un deuxième adénovirus recombinant comprenant, incorporés dans son génome, un acide nucléique codant pour une protéine d'enveloppe, et un acide nucléique comprenant, entre deux régions LTR, une séquence d'encapsidation rétrovirale et une séquence nucléique d'intérêt. 7. Composition selon l'une des revendications 1 à 3, caractérisée en ce que lesdits éléments génétiques sont répartis dans trois adénovirus recombinants. 8. Composition selon l'une des revendications 3 à 7, caractérisée en ce que les protéines gag et pol sont des protéines de rétrovirus choisis parmi MoMLV, ALV, BLV, MMTV, et RSV. 9. Composition selon l'une des revendications 3 à 7, caractérisée en ce que la protéine d'enveloppe est une protéine virale ou cellulaire permettant aux particules rétrovirales d'infecter les cellules humaines. 10. Composition selon la revendication 9, caractérisée en ce que la protéine d'enveloppe est une protéine d'enveloppe d'un virus GALV, A4070, RD114, VSVG ou de la rage. 11. Composition selon l'une des revendications 3 à 7, caractérisée en ce que la ou les régions LTR sont des régions LTR rétrovirales complètes ou des sous-domaines permettant de reconstituer des LTRs complets après activité reverse transcriptase. 2778670 12. Composition selon la revendication 11, caractérisée en ce que le LTR 5' est dépourvu du domaine U3 et le LTR 3' est dépourvu du domaine U5. 13. Composition selon la revendication 1 ou 2 caractérisée en ce que les éléments génétiques permettent la constitution d'une particule de lentivirus. 14. Composition selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce que le ou les adénovirus recombinants sont défectifs pour tout ou partie des régions El, E4 et E3. 15. Composition selon l'une quelconque des revendications 1 à 13, caractérisé en ce que le ou les adénovirus recombinants sont défectifs pour tout ou partie des régions El, E4 et E2. 16. Composition selon l'une quelconque des revendications 1 à 13, caractérisé en ce que le ou les adénovirus recombinants sont défectifs pour tout ou partie des régions El, E4 et E2 et E3. 17. Composition selon l'une quelconque des revendications 14 à 16, caractérisée en ce que le ou les adénovirus recombinants sont dépourvus en plus de tout ou partie des gènes codant pour les fonctions tardives de l'adénovirus. 18. Composition selon l'une quelconque des revendications 1 à 13, caractérisé en ce que le ou les adénovirus recombinants sont dépourvus de toute région virale codante. 19. Adénovirus recombinant défectif caractérisé en ce qu'il comprend, incorporé dans son génome, un ou plusieurs acides nucléiques codant pour les protéines rétrovirales gag et pol. 20. Adénovirus recombinant défectif, caractérisé en ce qu'il comprend, incorporé dans son génome, un acide nucléique codant pour une protéine d'enveloppe, et un acide nucléique comprenant, entre deux régions LTR complètes ou non, une séquence d'encapsidation rétrovirale et une séquence nucléique d'intérêt. 21. Composition comprenant un adénovirus recombinant selon la revendication 19 et un adénovirus recombinant selon la revendication 20. 22. Utilisation d'une composition selon l'une des revendications 1 à 18 ou 21 pour la production in vitro ou ex vivo de particules rétrovirales. 23. Utilisation d'une composition selon l'une des revendications 1 à 18 ou 21 pour la préparation d'un produit destiné à la production de particules rétrovirales in vivo. 24. Cellule modifiée par une composition selon l'une des revendications 1 à 18 ou 21 pour la préparation d'un produit destiné au transfert d'acides nucléiques dans les cellules in vivo 25. Procédé de production de particules rétrovirales in vitro, comprenant l'incubation de cellules en présence d'une composition selon l'une des revendications 1 à 18 ou 21. 26. Procédé selon la revendication 25, caractérisé en ce que les cellules sont des cellules d'origine humaine.