Brevet FR2783523A1 — publié le 20000324

FUCO-OLIGOSACCHARIDES, ENZYME POUR LEUR PRÉPARATION À PARTIR DES FUCANES, BACTÉRIE PRODUCTRICE DE L'ENZYME ET APPLICATIONS DES FUCO-OLIGOSACCHARIDES À LA PROTECTION DES PLANTES L'invention a pour objet des fuco-oligosaccharides particuliers obtenus à partir des fucanes. Elle a également pour objet une enzyme propre à la préparation desdits fuco-oligosaccharides par hydrolyse enzymatique des fucanes; elle vise de plus une bactérie productrice de l'enzyme et la préparation de cette enzyme à partir de la bactérie. Elle a enfin pour objet l'application de ces fucooligosaccharides à la protection des plantes. Les fucanes sont des polysaccharides à base de a-Lfucose. Ils peuvent être extraits de la paroi des algues brunes. Ils peuvent également être extraits des échinodermes. On a déjà préparé, par hydrolyse acide ou radicalaire, des fractions oligosaccharidiques à partir des fucanes. Diverses activités biologiques ont été étudiées tant en rapport avec les fucanes qu'en rapport avec certaines fractions de plus faible poids moléculaire. L'invention vise des fuco-oligosaccharides particuliers, une enzyme pour leur préparation et leurs applications dans le domaine de la protection des plantes. Les fuco-oligosaccharides conformes à l'invention sont sulfatés et ont un degré de polymérisation de 4 à 100, de préférence de 4 à 20 unités a-L fucose; deux d'entre eux sont caractérisés par les formules développées I et II représentées à la figure 1. Conformément à l'invention, ils sont préparés par hydrolyse enzymatique à partir des fucanes en faisant agir sur ceux-ci une enzyme que la Société Demanderesse a eu le mérite d'isoler. Cette enzyme est sécrétée par une souche bactérienne à activité fucanolytique que la Société Demanderesse a obtenue à partir des boues industrielles utilisées pour le traitement des effluents, riches en fucanes sulfatés, d'une usine d'extraction d'alginates. Pour ce faire, elle a procédé comme suit. Des boues, prélevées dans les bassins d'oxygénation et de décantation d'une station d'épuration située en aval d'une usine d'extraction d'alginates, sont utilisées comme inoculum d'un milieu pauvre à base d'eau de mer filtrée contenant 2 g/1 de fucane. En travaillant sur des parties aliquotes du milieu de culture ainsi constitué, on effectue chaque jour le test dit "à l'albumine sérique bovine" (ou BSA). Le principe de ce test est fondé sur le fait que les polysaccharides anioniques s'associent, en milieu acide, avec l'albumine chargée positivement, provoquant ainsi une précipitation de l'ensemble des complexes formés. Au contraire, les oligosaccharides et les oses ne sont pas précipités ou floculés car ils sont de trop faible poids moléculaire pour donner lieu à la formation d'un complexe insoluble. En vue du test BSA, on introduit 600 l du surnageant de culture dans un microtube de 1 ml et on centrifuge. Le surnageant, à savoir 500 l, est transféré dans un autre tube et mélangé à 2 ml de solution de BSA acide constituée par 3,26 g d'acétate de sodium, 4,56 ml d'acide acétique glacial et 1 g de BSA dans 1 1 d'eau distillée, le pH étant de 3,72 à 3,78. On traite parallèlement un témoin qui est constitué par 500 l de surnageant de culture sans inoculum. Compte tenu des explications qui précèdent, la formation d'un trouble identique à celui qui se produit dans le témoin indique qu'il n'y a pas eu de dégradation du polymère ; par contre, dans le cas où le trouble est moindre ou inexistant, on conclut à la présence, dans la culture bactérienne, d'une activité enzymatique spécifique du fucane. Le test s'est avéré positif au bout de 7 jours d'incubation du fucane en présence de l'inoculum décrit plus haut. Une partie aliquote du milieu de culture correspondant est alors étalée sur boîte de Pétri contenant le milieu connu sous l'appellation Zobell-Fucane, qui est constitué par le milieu Zobell (1941) additionné de fucane à 2 g/1 et solidifié par de l'agar à 15 g/1. La composition du milieu Zobell [Zobell CE(1941) "Studies on marine bacteria. I. The cultural requirements of heterotrophic aerobes" paru dans J. Mar. Res., 4 : 41-75] est comme suit: Bacto-peptone Difco 5,0 g Extrait de levure Difco 1,0 g Eau de mer filtrée 800 ml Eau distillée q. s.p. 1 1 On constate la formation dans la boîte de Pétri d'un certain nombre de colonies différentes les unes des autres et qui correspondent à autant de souches. Chacune de ces colonies, autrement dit chacune des souches, est isolée à partir de ce milieu et introduite dans un milieu liquide Zobell-Fucane constitué par 1/2 volume de Zobell et 1/2 volume d'une solution de fucane à 4 g/1 dans de l'eau de mer filtrée. Sur chacune des souches ainsi isolées et introduites dans le milieu Zobell-Fucane, on effectue le test BSA pour détecter les souches fucanolytiques. Lorsque le test est positif, la souche est repiquée sur milieu Zobell-Fucane pour vérifier qu'elle continue à hydrolyser les fucanes du nouveau milieu ; sitel est le cas, cela signifie que tout le dispositif génétique nécessaire à la production de la fucanase est mis en place ; dit alors que la souche est induite par le substrat ; autrement dit, la présence de fucanes dans le milieu induit la production de l'enzyme par la souche. En raison de cet état de choses, le test BSA est de nouveau effectué sur la nouvelle culture. En procédant ainsi, on a isolé une souche qui a été dénommée SW5 et qui donne un test BSA positif au bout de 3 à 4 jours lorsqu'elle est cultivée sur milieu Zobell-Fucane. La susdite souche SW5, sélectionnée de la manière venant d'être décrite, a été déposée sous le n 12171 dans la collection DSMZ (Deutsche Sammlung von Mikroorganismen und Zellkulturen GmbH) dont l'adresse est la suivante : Mascheroder Weg 1b, D-38124 Braunschweig, Allemagne. La souche est en bâtonnet Gram négatif, aérobie stricte, chimioorganotrophe et hétérotrophe. Au bout de trois jours de culture, les colonies sur milieu ZobellFucane solide sont petites (1 mm de diamètre) et pigmentées en orange. La souche SW5 nécessite de l'eau de mer pour sa croissance, sa température optimale de croissance se situant autour de 18-20 C. Aucune croissance n'est constatée en dessous de 15 C et au-dessus de 25 C. D'autres caractéristiques phénotypiques de la souche SW5 sont montrées dans le tableau I ci-après. TABLEAU I Caractères physiologiques et biologiques de la souche SW5 Caractères positifs Caractères négatifs Caractères négatifs (suite) catalase oxydase a-hydroxybutyrate a-cyclodextrine flexirubine P-hydroxybutyrate dextrine réduction des nitrates y-hydroxybutyrate glycogène formation d'indole p-hydroxyphénylacétate cellobiose fermentation arginine dihydrol itaconate D-fructose uréase a-kétobutyrate L-fucose tween 40 a-kétoglutarate D-galactose tween 80 a-kétovalérate gentobiose N-acétyl-D-galactosamine malonate a-D-glucose N-acétyl-D-glucosamine propionate a-D-Iactose adonitol quinate maltose L-arabinose D-saccharate D-mannose D-arabitol sébacate P-méthyl-D-glucoside érythritol succinate turanose m-inositol bromosuccinate mono-méthyl-succinate lactulose succinamate D-galacturonate D-mannitol glucuronamate D-glucuronate D-mélibiose alininamide D,L-lactate D-psicose D-alanine L-alanine D-raffinose L-histidine L-alanyl-glycine L-rhamnose D,L-camitine L-asparagine D-sorbitol y-aminobutyrate aspartate sucrose inosine L-glutamate D-tréhalose uridine glycyl-L-aspartate xylitol thymidine glycyl-L-glutamate méthyl pyruvate phényléthylamine L-omithine acétate putrescine L-proline cis-aconitate 2-aminoéthanol L-thréonine citrate 2,3-butanediol urocanate formate glycérol glucose- 1 -phosphate D-galactanate lactone D-,L-a-glycérol phosphate glucose-6-phosphate D-gluconate D-glucosaminate L'identité, à l'échelon de l'espèce, de la souche SW5 a été établie par la séquence nucléotidique ID No.1 du gène codant pour l'ARN 16S. La comparaison de la séquence de ce gène avec les gènes homologues issus de bactéries du groupe CFB (Cytophaga-Flavobacterium-Bacteroïsdes) a permis de construire un arbre phylogénétique dont il résulte que la souche appartient à la famille des Flavobacteriaceae (Bernardet et al, 1996, International Journal of Systematic Bacteriology, Jan : 128-148) et qu'elle est proche de Gelidibacter algens (Bowman et al, 1997, International Journal of Systematic Bacteriology, July : 670-677), une souche isolée des glaces de l'Antarctique. Il s'ensuit que le procédé conforme à l'invention pour la préparation des susdits fuco-oligosaccharides est caractérisé par le fait que l'on soumet un substrat constitué par une matière première à base de fucanes à une hydrolyse enzymatique à l'aide d'une enzyme fucanolytique susceptible d'être obtenue à partir d'une souche bactérienne déposée sous le N 12171 dans la collection DSMZ. Les fuco-oligosaccharides conformes à l'invention sont également caractérisés par le fait qu'ils sont susceptibles d'être préparés par mise en oeuvre du procédé conforme à l'invention. La bactérie SW5 secrète dans son milieu de culture des quantités significatives d'activité fucanase, pouvant être utilisées à température ambiante, en milieu tamponné à pH 7,5, voire dans l'eau. La préparation du substrat, autrement dit des fucanes qui doivent être soumis à l'action de l'activité enzymatique, est effectuée comme suit. On soumet 150 kg d'algue brune Pelvetia canaliculata à un broyage en vue d'obtenir des fragments de 2,5 à 3 mm, en utilisant un dispositif désigné par Comitrol 2100 et commercialisé par la Société Urschel. Ces fragments sont soumis à une extraction par 800 1 d'acide chlorhydrique 0,01 N contenant 4% en poids de CaCl2 en maintenant une agitation pendant 3 heures à 70 C. La suspension de fragments d'algue ainsi traitée est décantée pendant 2 h.30 et le rétentat obtenu est centrifugé ; le surnageant de l'opération de centrifugation est soumis à une ultrafiltration tangentielle sur des membranes de 50 kDa. Le rétentat obtenu à l'issue de cette ultrafiltration tangentielle est atomisé à l'aide d'un dispositif désigné par l'appellation Miro et commercialisé par la Société Minor Production. Le résultat de cette atomisation est une poudre constituée majoritairement par des fucanes. Cette poudre est soumise à une purification supplémentaire par remise en solution, centrifugation, précipitation du surnageant à l'éthanol, remise en solution du précipité dans l'eau et ultrafiltration de la solution aqueuse sur des membranes de 30000 Da. Le rétentat issu de cette ultrafiltration est soumis à une lyophilisation et constitue le substrat recherché ; le désigne par FS28EtOH. Ce substrat, autrement dit cette poudre de fucanes, est soumis à l'activité enzymatique obtenue à partir de la bactérie SW5. Pour ce faire, on prépare une solution à 1 g/1 de substrat FS28EtOH dans du tampon Tris (20 mM, pH 7,5); on prélève 50 l de cette solution et on la mélange à 10 ul de la fraction protéique à tester qui contient l'activité enzymatique obtenue à partir de la bactérie SW5. Le mélange est maintenu pendant 1 heure à température ambiante. L'hydrolysat final contient le mélange de fucooligosaccharides conformes à l'invention. Cet hydrolysat est soumis à une électrophorèse en vue de mettre en évidence de façon qualitative la présence de fractions oligosaccharidiques ; électrophorèse est effectuée sur gel de polyacrylamide en utilisant la technique dite C-PAGE décrite par Zablackis E. et Perez J. (1990) dans l'article intitulé "A partially pyruvated carrageenan from Hawaiian Grateloupia filicina (Cryptonemiales, Rhodophyta) paru dans "Bot. Mar." 33: 273-276. Les profils de dégradation des fucanes obtenus à l'aide de l'enzyme produite par la bactérie SW5 montrent que l'activité enzymatique de la souche en question est de type endolytique; il a été remarqué au cours des essais que les fucanes présentent des éléments de structure semblables quelle que soit l'algue brune dont ils sont extraits. L'activité endo-fucanase de la souche SW5 a été purifiée à l'homogénéité électrophorétique; on a déterminé que la protéine en question a une masse moléculaire d'environ 105 kDa. Trois peptides internes ont alors été microséquencés. On a ainsi obtenu les microséquences ID No.2, ID No.3 et ID No.4. L'invention vise également les gènes d'endofucanase caractérisés par le fait qu'ils codent pour des protéines contenant les microséquences ID No.2, ID No. 3 et ID No. 4. La purification de l'activité endo-fucanase dont il a été question plus haut, a été effectuée à l'aide d'un système commercialisé sous l'appellation FPLC# par la Société Pharmacia; ce système a été placé à 4 C. Après cinq jours de culture de la souche SW5 dans 6 1 de milieu Zobell-Fucane, on procède à une microfiltration sur un dispositif du type Pellicon de la Société Millipore équipé d'une cassette de 0,45 um (Millipore) puis à une ultrafiltration sur une cassette PTGC de 30 000 Da. Pour le fractionnement des protéines, on procède de la façon suivante: Pour le premier fractionnement de 0 à 40%, on ajoute à la solution protéique du (NH4)2S04 à 242 g/1 petit à petit et sous agitation lente à 4 C. Lorsque tout le sulfate d'ammonium est dissous, la solution est centrifugée; le culot, qui représente la fraction entre 0 et 40% n'est pas conservé tandis que le surnageant est soumis à un nouveau fractionnement de 40 à 60%. Ce fractionnement est réalisé par addition de (NH4)2SO4 à 130 g/1 petit à petit et sous agitation lente à 4 C. Lorsque tout le solide est dissous, la solution est centrifugée; le culot, qui représente la fraction protéique entre 40 et 60% de saturation du sulfate d'ammonium, est conservé et resolubilisé dans le tampon Tris 20 mM pH 7,5, NaCl 50 mM, CaCl2 5 mM, MgCl2 5 mM. La fraction entre 40 et 60% de saturation du sulfate d'ammonium est diluée 20 fois dans du tampon Tris 20mM pH 7,5 et resaturée à 40% de (NH4)2SO4. L'échantillon ainsi obtenu est injecté sur une colonne de chromatographie d'interaction hydrophobe à base de Phenyl Sepharose CL4B Pharmacia à raison de 1 ml/min. La colonne est préalablement équilibrée avec du tampon Tris pH 7,5; (NH4)2SO4 à 40%. Le gradient s'effectue par diminution de la concentration en (NH4)2SO4 de 1,8 M (40%) à 0 M dans du tampon Tris en 3 volumes de colonne, puis par 2 volumes de tampon sans (NH4)2S04. Chaque fraction protéique est utilisée pour hydrolyser le fucane FS28EtOH. L'hydrolysat est préparé comme décrit précédemment par ajout de ladite fraction à une solution de fucane à 1 g/1 dans du tampon Tris 20 mM pH 7,5 contenant des sels. L'hydrolysat est alors testé par la technique C-PAGE. Les fractions dites "positives sur C-PAGE" sont celles qui génèrent un profil électrophorétique contenant des fractions d'oligo-fucosaccharides. Les fractions qui génèrent un profil de dégradation positif sur gel de polyacrylamide sont rassemblées et diluées 5 fois dans du tampon Tris 20 mM pH 7,5; NaCl 5 mM avant d'être injectées sur une colonne de chromatographie d'échange d'anions chargée en DEAE Sepharose CL6B commercialisé par la Société Pharmacia. Les protéines sont éluées par un gradient de NaCl de 5 mM à 1 M en 3 volumes de colonne, à 1 ml/min. Ces fractions sont ensuite injectées à raison de 100 l sur une colonne de filtration, chargée de gel Superdex 200 commercialisé par la Société Pharmacia et préalablement équilibrée à raison de 0,5 ml/min dans du tampon phosphate de sodium 50 mM pH 7,0; NaCl 150 mM. La fraction active, identifiée par la technique C- PAGE, est recueillie et la pureté de la protéine est déterminée sur un gel SDS à 12,5% en utilisant le dispositif Phast-System# de la Société Pharmacia. Les marqueurs moléculaires utilisés sont les standards de 14,5 à 200 kDa commercialisés sous l'appellation "broad-range" par la Société Biorad. Pour la préparation des fuco-oligosaccharides, on peut avoir recours à plusieurs méthodes dont deux sont décrites ci-après. Dans une première méthode, on laisse agir l'enzyme jusqu'à consommation complète du substrat ; incube pendant 24 heures un fucoïdane de Pelvetia canaliculata en présence de l'enzyme partiellement purifiée, puis on ultrafiltre les produits d'hydrolyse sur membrane de 500 Da. On obtient ainsi une fraction désignée par 127. Du point de vue pratique, on hydrolyse un fucane extrait de Pelvetia canaliculata (fraction FS28EtOH) à la température ambiante pendant 24 heures, en ajoutant à 1 litre de substrat d'une concentration de 5 g/1 dans le tampon Tris 20 mM pH 7,5; NaCl 50 mM; MgCl2 5 mM; CaCl2 5 mM, une quantité de 30 ml de précipité d'enzyme au sulfate d'ammonium 40-60% (3,02 mg de protéines). L'hydrolysat ainsi obtenu est complété par de l'eau distillée jusqu'à 20 1, puis ultrafiltré sur un système d'ultrafiltration tangentielle de 10 000 Da en utilisant une cassette 0,46 m2 PTGC de la Société Millipore avec une pression d'entrée de 6,5 bars et une pression de sortie de 5,5 bars. L'ultrafiltrat ainsi obtenu est récupéré et de nouveau ultrafiltré sur 500 Da en utilisant le dispositif commercialisé sous la marque Omega Centraset OM500DC05 par la Société Pall Filtron avec 1 bar en entrée de circuit et une pression nulle de sortie ; nouvelle ultrafiltration vise à dessaler l'ultrafiltrat. En vue de fractionner les oligomères, le rétentat est de nouveau ultrafiltré sur 500 Da mais avec des pressions d'entrée de 2,5 bars et 2 bars à la sortie. Le filtrat qui passe le seuil de coupure de 500 Da (environ 20 1) de la membrane est ensuite concentré sur évaporateur rotatif, neutralisé au carbonate d'ammonium puis lyophilisé en utilisant le dispositif commercialisé sous la marque Lyolab A LSL par la Société Secfroid. Le lyophilisat ainsi obtenu contient les oligofucanes appelés 127. Les oligofucanes de la fraction 127 ainsi obtenus ont été soumis à un fractionnement supplémentaire par chromatographie d'échange d'ions et filtration de gel. Le chromatogramme de filtration obtenu sur un gel de la marque BIOGEL P6 est reproduit sur le graphique de la figure 2 qui montre en abscisse le volume d'élution (Ve) exprimé en ml et en ordonnées l'indice réfractométrique (RI) de l'éluat. La structure des oligosaccharides ainsi obtenus (pics 1A à 4A du chromatogramme) a été analysée par RMN bidimensionnelle. Il s'agit, dans le cas des pics 4A et 3A, respectivement d'un tétrasaccharide et d'un hexasaccharide formés par des résidus de fucose alternativement reliés par des liaisons a(l->3) et a(l->4) et sulfatés sur leur carbone 2 (figure 1 ) . Les pics 2A et 1A sont, quant à eux, constitués par des mélanges de DP variable d'oligosaccharides de la même série homologue, mais pouvant comporter des branchements. Ce résultat suggère que les polysaccharides de départ sont constitués, au moins partiellement, par la répétition de motifs a-L-Fuc-2-sulfate-l->3-a-L-Fuc-2- sulfate-l->4 non décrits à ce jour. Une deuxième méthode comporte une hydrolyse en continu ; elle consiste, à l'aide d'une membrane d'ultrafiltration de 30 kDa, à soustraire à l'action de l'enzyme les oligofucanes à mesure de leur formation. La fraction ainsi obtenue est désignée par "fraction 125" et contient des oligofucanes de masse moléculaire plus élevée que ceux constituant la fraction 127. Du point de vue pratique, on dissout le substrat (50 g de FS28EtOH) dans 10 litres d'eau distillée. Pour effectuer l'hydrolyse, on ajoute 25 ml d'enzyme sous forme d'une fraction précipitée au sulfate d'ammonium entre 40 et 60% de saturation, dans 2 litres de substrat; l'ultrafiltration en continu est engagée après 30 minutes. Pour cette ultrafiltration, on utilise un appareil de marque Pellicon comportant une cassette de 30 000 Da, ledit appareil étant réglé sur 1 bar en entrée et 0 bar en sortie pendant toute la durée de l'hydrolyse. La sortie du filtrat est partiellement fermée pour maintenir le débit de filtration à 2 1/h. Les caractéristiques de l'enceinte réactionnelle sont choisies de façon à permettre un approvisionnement de l'enzyme en substrat jusqu'à épuisement des 10 litres et le maintien d'un volume fixe d'hydrolyse de 2 litres. L'hydrolyse est poursuivie en ajoutant de l'eau distillée (8 litres) en continu jusqu'à ce que le filtrat ne contienne plus d'oligomères. On obtient 18 litres d'un ultrafiltrat qui est concentré jusqu'à environ 1 litre à l'aide d'un appareil Pellicon équipé d'une cassette de 500 Da, la pression d'entrée étant de 2 bars et la pression de sortie de 0 ; concentration supplémentaire jusqu'à 200 ml est effectuée par évaporation rotative, puis le concentrat est neutralisé et lyophilisé. Le filtrat, qui contient les fractions de faible poids moléculaire (c'est-à-dire capable de passer sur une membrane au seuil de coupure de 500 Da) n'a pas été conservé. La fraction 125 désigne les oligofucanes retenus entre les seuils de coupure de 500 Da et 30000 Da. On a étudié l'activité biologique des fractions 127 et 125 sur les plantes. L'effet éliciteur direct de ces fractions a été analysé sur des cultures de cellules de Tabac BY. Cinq marqueurs des réactions de défense ont été testés indépendamment, à savoir: - l'alcalinisation du milieu de culture (réponse précoce couramment observée lorsque les plantes sont incubées en présence d'éliciteurs oligosaccharidiques), - les niveaux d'activité "phénylammonia lyase" (PAL) qui est une enzyme clé pour la synthèse des phytoalexines chez les plantes, - les niveaux d'activité 0-méthyl transférase (OMT) qui est une enzyme impliquée dans la synthèse de lignine, - les niveaux d'activité lipoxygénase (LOX) qui est une enzyme impliquée dans la génération de jasmonate de méthyle, un élément des cascades de signalisation aboutissant à l'activation de gènes de défense et - les teneurs en acide salicylique (SA) qui est un autre messager secondaire impliqué dans les réactions de défense. La fraction 127, administrée à une dose de 200 mg/1, induit une alcalinisation du milieu de culture des cellules de tabac de 1 à 1,5 unités pH. Par rapport aux cellules non traitées, les activités PAL et OMT sont stimulées respectivement d'un facteur 50 à 600 et 2,0 à 2,8, entre 4 heures et 8 heures après l'addition de 127 au milieu de culture. L'activité LOX, mesurée 18 heures après l'addition de 127 à la dose de 200 mg/1 est 7 fois plus importante que dans les cellules témoins. De même, 3 heures après le début du traitement, les teneurs en acide salicylique sont 70 fois plus importantes que dans les cellules non traitées. Des résultats analogues ont été observés avec la fraction 125. On note toutefois une stimulation plus forte de l'activité LOX, jusqu'à un facteur multiplicatif de 55 par rapport aux cellules témoins. La figure 3 illustre l'influence de la fraction 125 sur la stimulation de l'activité PAL dans les cellules de tabac BY ; montre la variation de l'activité exprimée en pico-katal par g (pKat/g) de masse fraîche de suspension cellulaire en fonction du temps exprimé en heures pour trois concentrations, à savoir 200 mg/1, 50 mg/1 et 10 mg/1 et pour un témoin. L'examen de la figure 3 montre que des concentrations de 10 mg/1 sont suffisantes pour déceler une stimulation significative par rapport aux cellules témoins non élicitées et on observe une saturation de la réponse pour les concentrations supérieures à 50 mg/1. Les résultats de ces expériences montrent que les oligofucanes conformes à l'invention sont reconnus comme des éliciteurs par les cellules de tabac. Par rapport à des cellules non traitées, ils stimulent très fortement (c'est-à-dire dans des proportions tout à fait comparables à celles d'autres éliciteurs comme les oligopectines et les oligo ss 1-3 glucanes), les activités PAL, LOX et OMT ainsi que les teneurs en SA. LISTE DE SEQUENCES (1) INFORMATIONS GENERALES: (i) DEPOSANT : (A) NOM : GOËMAR S.A. (B) RUE : de la Madeleine (C) VILLE : MALO (E) PAYS : (F) CODE POSTAL : (G) TELEPHONE : 2 99 21 53 70 (G) TELEFAX : 2 99 8256 17 (G) TELEX: (ii) TITRE DE L'INVENTION: Fuco-oligosaccharides, enzyme pour leur préparation à partir des fucanes, bactérie productrice de l'enzyme et applications des fuco-oligosaccharides à la protection des plantes. (iii) NOMBRE DE SEQUENCES : (iv) FORME DECHIFFRABLE PAR ORDINATEUR: (A) TYPE DE SUPPORT: disquette (B) ORDINATEUR : PC compatible (C) SYSTEME D' EXPLOITATION : PC-DOS/MS-DOS (D) LOGICIEL: (v) DONNEES DE LA DEMANDE ACTUELLE: NUMERO DE LA DEMANDE: DATE DE DEPOT : septembre 1998 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 1: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR : nucléotides (B) TYPE : séquencenucléotidique (C) NOMBRE DE BRINS : brin (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: gènr de l'ARN 16S (iii) HYPOTHETIQUE : (iv) ANTI-SENS : (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME : Station Biologique, Laboratoire de Biologie cellulaire et moléculaire des algues, 29682 Roscoff Cedex (B) SOUCHE : (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 1 : AGAGTTTGAT CNTGGCTCAG GATGAACGCT AGCGGCAGGC CTAACACATG CAAGTCGAGG 060 GGTAGAGAGA GCTTGCTTTT CTTGAGACCG GCGCACGGGT GCGTAACGCG TATACAATCT 120 GCCTCTTACT GCGGGATAGC CCAGAGAAAT TTGGATTAAT ATCGCATAGC ATAACGACCC 180 CGCATGGGAT GTTATTAAAG GTTACGGTAA GAGATGAGTA TGCGTTCTAT TAGCTAGATG 240 GAGTGGTAAC GGCACACCAT GGCAACGATA GATAGGGGCC CTGAGAGGGG GATCCCCCAC 300 ACTGGTACTG AGACACGGAC CAGACTCCTA CGGGAGGCAG CAGTGAGGAA TATTGGACAA 360 TGGAGGCAAC TCTGATCCAG CCATGCCGCG TGCAGGAAGA CGGCCCTATG GGTTGTAAAC 420 TGCTTTTATA CGGGAAGAAA CACCGCTACG TGTAGCCTTT GACGGTACCG TAAGAATAAG 480 GATCGGCTAA CTCCGTGCCA GCAGCCGCGG TAATACGGAG GATCCAAGCG TTATCCGGAA 540 TCATTGGGTT TAAAGGGTCC GTAGTGGATG ATTAAGTCAG AGGTGAAATC CTGCCGCTCA 600 ACGGTAGAAT TGCCTTTGAT ACTGGTTATC TTGAATCAAT GTGAAGTGGT TAGAATATGT 660 AGTGTAGCGG TGAAATGCAT AGATATTACA TAGAATACCA ATTGCGAAGG CAGATCACTA 720 ACATTGTATT GACACTGATG GACGAAAGCG TGGGGAGCGA ACAGGATTAG ATACCCTGGT 780 AGTCCACGCC GTAAACGATG GATACTAGCT GTTCGGATTT ATCTGAGTGG CTAAGCGAAA 840 GTGATAAGTA TCCCACCTGG GGAGTACGTT CGCAAGAATG AAACTCAAAG GAATTGACGG 900 GGGCCCGCAC AAGCGGTGGA GCATGTGGTT TAATTCGATG ATACGCGAGG AACCTTACCA 960 GGGCTTAAAT GTAGATTGCA TTAGGTGGAG ACACTTATTT CTTCGGACCA TCTACAAGGT 1020 GCTGCATGGT TGTCGTCAGC TCGTGCCGTG AGGTGTCAGG TTAAGTCCTA TAACGAGCGC 1080 AACCCCCGTT GTTAGTTGCC AGCGAGTCAT GTCGGGAACT CTANCAAGAC TGCCAGTGCA 1140 AACTGTGAGG AAGGTGGGGA TGACGTCAAA TCATCACGGC CCTTACGTCC TGGGCTACAC 1200 ACGTGCTACA ATGGTAGGGA CAGAGAGCAG CCACTGGGCG ACCAGGAGCG AATCTATAAA 1260 CCCTATCACA GTTCGGATCG GAGTCTGCAA CTCGACTCCG TGAAGCTGGA ATCGCTAGTA 1320 ATCGCATATC AGCCATGATG CGGTGAATAC GTTCCCGGGC CTTGTACACA CCGCCCGTCA 1380 AGCCATGGAA GCTGGGAGTG CCTGAAGTCC GTCACCGCAA GGAGCGGCCT AGGGTAAAAT 1440 CGGTAACTAG GGCTAAGTCG TAACAAGGTG TCCG 1474 (3) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 2 : (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR : acides aminés (B) TYPE : peptidique (C) NOMBRE DE BRINS : brin (D) CONFIGURATION : (ii) TYPE DE MOLECULE: protéine (iii) HYPOTHETIQUE : (iv) ANTI-SENS : (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME : Station biologique, Laboratoire de biologie cellulaire et moléculaire des algues, 29682 Roscoff Cedex (B) SOUCHE : (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 1 : Gln Thr Ala Asn Thr Thr Tyr Gly Ile Asn Thr Val Ala Ser Met 5 10 15 (4) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 3 : (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR : acides aminés (B) TYPE : peptidique (C) NOMBRE DE BRINS : brin (D) CONFIGURATION : (ii) TYPE DE MOLECULE : (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 3 : Thr Ser Gly Pro Asp Trp Leu Thr Ile Gln Gln Thr Asp Ala Asn Ser 5 10 15 Gly Lys (5) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 4 : (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR : acides aminés (B) TYPE : peptidique (C) NOMBRE DE BRINS : brin (D) CONFIGURATION : (ii) TYPE DE MOLECULE : (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 4 : Ile Thr Val Asp His Val Ala Gly Phe Thr Asn Leu Trp Asn Gly Ala 5 10 15 Pro REVENDICATIONS 1. Fuco-oligosaccharides sulfatés dont le degré de polymérisation est de 4 à 100, de préférence de 4 à 20 unités a-L fucose. 2. Fuco-oligosaccharides répondant aux formules (I) et (II) représentées à la figure 1. 3. Souche bactérienne en bâtonnet Gram négatif déposée sous le N 12171 dans la Collection DSMZ. 4. Endofucanase susceptible d'être obtenue à partir de la souche bactérienne selon la revendication 3. 5. Gène(s) d'endofucanase caractérisés par le fait qu'il(s) cod(ent) pour des protéines contenant les microséquences ID No. 2, ID No. 3 et ID No. 4. 6. Procédé de préparation des fuco-oligosaccharides selon les revendications 1 et 2, caractérisé par le fait qu'il comporte une étape d'hydrolyse enzymatique mettant en oeuvre l'endofucanase selon la revendication 4. 7. Fuco-oligosaccharides susceptibles d'être obtenus par mise en oeuvre du procédé selon la revendication 6. 8. Composition phytopharmaceutique pour la protection des plantes comprenant une quantité efficace de fucooligosaccharides selon l'une des revendications 1,2 et 7. 9. Utilisation pour un traitement de protection des plantes, des fuco-oligosaccharides selon l'une des revendications 1,2 ou 7.