Brevet FR2775688A1 — publié le 19990910

NOUVELLE FAMILLE DE CANAUX POTASSIUM DE MAMMIFERES MECANOSENSIBLES ET ACTIVES PAR LES ACIDES GRAS POLYINSATURES ET LEUR UTILISATION NOTAMMENT POUR LE CRIBLAGE DE DROGUES. La présente invention concerne une nouvelle classe de canaux potassium mécanosensibles activés par les acides gras polyinsaturés. L'invention est basée sur la découverte d'un nouveau canal potassium, dénommé TRAAK pour TWICK-Related AA-Actived K+channel, mécanosensibles activés par les acides gras polyinsaturés et également par le riluzole qui est un agent neuroprotecteur. Les propriétés des canaux de la famille TRAAK ainsi que leur distribution tissulaire confère à ces canaux un rôle primordial dans le transport de potassium chez un grand nombre de types cellulaires. Les canaux potassium sont des protéines ubiquitaires et leur exceptionnelle diversité fonctionnelle en font des candidats idéaux pour un grand nombre de processus biologiques. Ils interviennent notamment dans la régulation de l'excitabilité neuronale et musculaire, sur le rythme cardiaque et sur la sécrétion d'hormone. Trois types structuraux de canaux potassium ont été décrits chez les mammifères. Le premier est le type "Shaker" qui est composé de sousunités ayant 6 segments transmembranaires et un domaine P qui est impliqué dans la formation du pore ionique. Le second est le type IRK à deux segments transmembranaires et un domaine P. Le troisième a été décrit plus récemment et correspond au type TWIK qui a quatre segments transmembranaires et deux domaines P. Trois canaux de ce type ont été identifiés : TWIK-1 (Fink, M. et al. EMBO J. 15, 6854-6862 (1996), Lesage, F. et al EMBO J. 15, 1004-1011 (1996) TREK-1 et TASK (Duprat, F. et al. EMBO J. 16, 5464-5471 (1997). En dépit d'une structure générale conservée, ils ont des séquences primaires peu similaires, puiqu'ils présentent entre 20 à 25 % d'identité en acide aminé. La présente invention est fondée sur la découverte et le clonage d'un nouveau canal désigné TRAAK, membre de la famille des canaux TWIK. Le gène codant ce canal est plus particulièrement homologue au niveau de sa séquence d'acides aminés au canal TREK-1 avec lequel il présente 38% d'identité en acide aminé. Le présente invention est également fondée sur les propriétés électrophysiologiques uniques de ces deux canaux TREK-1 et TRAAK. En effet, ces canaux produisent tous les deux des courants sélectifs au potassium qui sont activés par une tension appliquée à la membrane cellulaire, canaux dits mécanosensibles, ou par l'application d'acides gras polyinsaturés, notamment l'acide arachidonique qui est un messager essentiel de la communication inter et intra-cellulaire et un important modulateur de l'excitabilité neuronale (Ordway, R. W., Singer, J.J. et Walsh, j. V. 14, 96-100 (1991), Bliss, T. V. P. et Collingridge, G. L. Nature 31-39 (1993), Piomelli, D. Curr. Opin. Cell. Biol. 5, 274-280 (1993), Meves, H. Prog. Neurobiol. 43, 175-186 (1994), Piomelli, D. Crit. Rev. Neurobiol. 8, 65-83 (1994) . Ces canaux sont également ouverts par le riluzole qui est un agent neuroprotecteur (Malgouris, C. et al. j. Neurosci. 9, 3720-3727 (1989), Pratt, j. et al. Neurosci. Lett. 140, 225-230 (1992) utilisé en clinique pour prolonger la survie de malades atteints de sclérose latérale amyotrophique. La mise en évidence de cette nouvelle classe de canaux potassium et l'expression hétérologue de ces canaux permet notamment de disposer de nouveaux moyens pour rechercher par criblage des drogues capables de moduler l'activité de ces canaux potassium et donc de prévenir ou de traiter des maladies impliquant ces canaux, comme l'épilepsie, les pathologies cardiaques (arythmies) et vasculaires, les neurodégénérescences, particulièrement celles qui sont associées aux ischémies et aux anoxies, les pathologies endocriniennes associées à des anomalies dans la sécrétion d'hormones, les pathologies musculaires. La présente invention a donc pour objet une protéine purifiée constituant un canal potassium mécanosensible activé par les acides gras polyinsaturés notamment l'acide arachidonique et par le riluzole. Plus particulièrement, l'invention concerne la protéine constituant le canal TRAAK dont la séquence en acides aminés est représentée dans la liste de séquences en annexe sous le numéro SEQ ID No : 1 ou un dérivé fonctionnellement équivalent de cette protéine. De tels dérivés sont ceux dont la séquence comprend une modification et/ou une suppression et/ou une addition d'un ou plusieurs résidus d'acides aminés, dès lors que cette modification et/ou supression et/ou addition ne modifie pas les propriétés du canal TRAAK. De tels dérivés peuvent être analysés par l'homme du métier selon les techniques décrites dans les exemples donnés ci-après qui ont permis de mettre en évidence les propriétés biophysiques et pharmacologiques du canal TRAAK. Un tel dérivé est plus particulièrement le canal TREK-1 dont la séquence en acides aminés est représentée dans la liste de séquences en annexe sous le numéro SEQ ID No : 2. Des anticorps poly ou monoclonaux dirigés contre au moins une protéine constituant un canal ionique de l'invention peuvent être préparés par les méthodes classiques décrites dans la littérature. Ces anticorps sont utiles pour rechercher la présence des canaux ioniques de l'invention dans différents tissus humains ou animaux, mais ils peuvent aussi trouver des applications dans le domaine thérapeutique pour inhiber ou activer in vive, grâce à leur spécificité, un canal TRAAK et/ou ses dérivés. La présente invention a aussi pour objet une molécule d'acide nucléique purifiée comprenant ou constituée par une séquence nucléique codant pour une protéine constituant un canal potassium mécanosensible activé par les acides gras polyinsaturés notamment l'acide arachidonique et par le riluzole. Plus particulièrement l'invention concerne une molécule d'acide nucléique comprenant au moins une séquence codant pour la protéine constituant le canal TRAAK dont la séquence en acides aminés est représentée dans la liste de séquences en annexe sous le numéro SEQ ID No:l ou pour un dérivé fonctionnellement équivalent de cette protéine. Une molécule d'ADN comprenant la séquence codant pour la protéine TRAAK est représentée dans la liste de séquences en annexe sous le numéro SEQ ID NO:1 ou sa séquence complémentaire. Plus particulièrement, une telle séquence d'acide nucléique comprend la séquence comprise entre les nucléotides 284 et 1477 de SEQ ID No:l ou sa séquence complémentaire. Une autre séquence d'acide nucléique selon l'invention comprenant au moins une séquence codant pour la protéine constituant le canal TREK-1 dont la séquence en acides aminés est représentée dans la liste de séquences en annexe sous le numéro SEQ ID No:2 ou pour un dérivé fonctionnellement équivalent de cette protéine. Une molécule d'ADN comprenant la séquence codant pour la protéine TREK-1 est représentée dans la liste de séquences en annexe sous le numéro SEQ ID NO:2 ou sa séquence complémentaire. Plus particulièrement, une telle séquence d'acide nucléique comprend la séquence comprise entre les nucléotides 484 et 1596 de SEQ ID No:2. L'invention concerne également un vecteur comprenant au moins une molécule d'acide nucléique précédente, avantageusement associée à des séquences de contrôle adaptés, ainsi qu'un procédé de production ou d'expression dans un hôte cellulaire d'une protéine constituant un canal ionique selon l'invention. La préparation de ces vecteurs ainsi que la production ou l'expression dans un hôte des canaux de l'invention peuvent être réalisées par les techniques de biologie moléculaire et de génie génétique bien connues de l'homme du métier. A titre d'exemple, un procédé de production d'une protéine constituant un canal cationique selon l'invention consiste - à transférer une molécule d'acide nucléique de l'invention ou un vecteur contenant ladite molécule dans un hôte cellulaire, - à cultiver ledit hôte cellulaire dans des conditions permettant la production de la protéine constituant le canal potassium, - à isoler, par tous moyens appropriés les protéines constituant les canaux potassium de l'invention. A titre d'exemple, un procédé d'expression d'un canal ionique selon l'invention consiste - à transférer une molécule d'acide nucléique de l'invention ou un vecteur contenant ladite molécule dans un hôte cellulaire, - à cultiver ledit hôte cellulaire dans des conditions permettant l'expression des canaux potassium de l'invention. L'hôte cellulaire mis en oeuvre dans les procédés précédents peut être choisi parmi les procaryotes ou les eucaryotes et notamment parmi les bactéries, les levures, les cellules de mammifères, de plantes ou d'insectes. Le vecteur utilisé est choisi en fonction de l'hôte dans lequel il sera transféré; il peut s'agir de tout vecteur comme un plasmide. L'invention concerne donc aussi les hôtes cellulaires et plus particulièrement les cellules transformés exprimant des canaux potassium présentant des propriétés et une structure du type de celles du canal TRAAK obtenues conformément aux procédés précédents. Ces cellules sont utiles pour le criblage de substances capables de moduler les courants des canaux TRAAK. Ce criblage est effectué en mettant en contact des quantités variables d'une substance à tester avec des cellules exprimant les canaux de l'invention, puis en mesurant, par tous moyens appropriés, les effets éventuels de ladite substance sur les courants potassium desdits canaux. Des techniques électrophysiologiques permettent également ces études et font aussi l'objet de la présente invention dès lors qu'elles mettent en oeuvre les canaux TRAAK ou leurs dérivés. Ce procédé de criblage permet d'identifier des drogues capables de moduler l'activité des canaux potassium de l'invention et donc susceptibles de prévenir ou de traiter des maladies impliquant ces canaux. Ces substances et leur utilisation comme médicament, isolés et détectés grâce aux procédés ci-dessus, font également partie de 1' invention. Plus particulièrement, l'invention concerne donc une substance chimique ou biologique capable de modifier les courants d'un canal potassium selon l'invention pour la préparation d'un médicament utile pour prévenir ou traiter des maladies du coeur ou du système nerveux chez un sujet humain ou animal, comme les pathologies cardiaques (arythmies) et vasculaires, les neurodégénérescences, particulièrement celles qui sont associées aux ischémies et aux anoxies, les pathologies endocriniennes associées à des anomalies dans la sécrétion d'hormones, les pathologies musculaires Une molécule d'acide nucléique codant pour une protéine constituant un canal TRAAK ou un dérivé de celui-ci, ou un vecteur comprenant cette molécule d'acide nucléique ou encore une cellule exprimant des canaux TRAAK, sont aussi utiles pour la préparation d'animaux transgéniques. Il peut s'agir d'animaux surexprimant lesdits canaux, mais surtout d'animaux dit "knock out", c'est à dire présentant une déficience en ces canaux; ces animaux transgéniques sont préparés par des méthodes connues de l'homme du métier, et permettent de disposer de modèles vivants pour l'étude de pathologies animales associées aux canaux TRAAK. Ces animaux transgéniques de même que les hôtes cellulaires décrits précédemment sont utiles en tant que modèles pour l'étude de pathologies associées à ces canaux potassium mécanosensibles activés par les acides gras polyinsaturés soient parce qu'ils surexpriment les canaux potassium du type canal TRAAK, soit parce qu'ils présentent une déficience en ces canaux potassium. En outre, une protéine constituant un canal ionique neuronal TRAAK peut être aussi utile pour la fabrication de médicaments destinés à traiter ou prévenir des pathologies impliquant ces canaux. L'invention concerne donc aussi les compositions pharmaceutiques comprenant comme principe actif au moins une de ces protéines éventuellement associée à un véhicule physiologiquement acceptable. De même, les molécules d'acide nucléique de l'invention ou les cellules transformées par ladite molécule sont donc susceptibles d'être utilisées dans des stratégies de thérapie génique afin de compenser une déficience des canaux TRAAK au niveau de un ou plusieurs tissus d'un patient. L'invention concerne donc aussi un médicament comprenant des molécules d'acide nucléique de l'invention ou de cellules transformées par lesdites molécules pour le traitement de pathologie impliquant les canaux TRAAK et leurs dérivés. D'autres avantages et caractéristiques de l'invention apparaitront à la lecture des exemples qui suivent rapportant le travail de recherche ayant mené à l'identification et à la caractérisation de ces canaux potassium mécanosensibles activés par les acides gras et où il sera fait référence aux séquences et dessins en annexe dans lesquels - la figure 1 et SEQ ID NO:1 représentent la séquence nucléotidique de l'ADNc de TRAAK et la séquence en acide aminé de la séquence codante. - la figure 2 représente l'alignement des séquences de TWIK-1, TREK-1, TASK et TRAAK qui sont les quatre canaux du type TWIK actuellement clonés chez les mammifères ainsi que le dendrogramme déduit de cet alignement. Les résidus identiques sont représentés sur fond noir et les résidus conservés sur fond gris. - la figure 3 représente l'analyse par RT PCR de la distribution de TREK-1 et TRAAK dans les tissus de la souris adulte. Des fragments des transcripts codant TREK-1 et TRAAK ont été amplifiés par PCR à l'aide d'oligonucléotides spécifiques, transferés sur membrane de nylon puis sondés avec des oligonucléotides internes marqués au phosphore 32. - la figure 4 montre les propriétés électrophysiologiques des courants TRAAK enregistrés par la technique de voltage imposé sur des ovocytes de Xénope ayant reçu une injection d'ARNc de TRAAK (a, b, c) et sur des cellules COS transfectés avec un vecteur exprimant TRAAK (d, e, f). En (a) : les ovocytes ont été maintenus à un potentiel de -80 mV puis les courants ont été enregistrés à la suite de sauts de potentiel de -150 à +50 mV par incrément de 20 mV. Les enregistrements ont été réalisés dans un milieu externe contenant une concentration en K+ de 2 mM ou de 74 mM. En (b) relation courant-potentiel selon la même expérience qu'en (a). En (c) : renversement de potentiel (Erev) des courants TRAAK en fonction de la concentration externe en K+. En (d) : courants enregistrés sur des cellules COS transfectées par TRAAK suivant le même protocole qu'en (a). En (e) : relation courant-potentiel selon la même expérience qu'en (d). - la figure 5 montre l'effet de l'osmolarité du milieu externe sur des ovocytes ayant reçu une injection d'ARNc TREK-1 ou TASK. En (A) : comparaison des effets de l'application d'une solution hypertonique (417 mOsm, par addition de mannitol) sur des ovocytes témoins TREK-1. Les courants sont mesurés après un saut de potentiel de -80 à +80 mV. En inset est montré le courant TREK-1 avant et après (indiqué par une flêche) l'application de la solution hypertonique. En (B) effet réversible d'une solution hypertonique (434 mOsm, par addition de sucrose) sur les relations courantpotentiel déduites de rampes de potentiel qui durent 600 msec. En inset est montré la cinétique de l'effet produit par la solution hypertonique. Les courants sont mesurés à 80mV. - la figure 6 montre que TREK-1 est un canal potassium mécanosensible dans les cellules COS transfectées. En (B) : activités canal (N*Po) dans des "patches" de membrane maintenus à 0 mV et obtenus dans la configuration cellule attachée à partir de cellules témoins (CD8), ou de cellules transfectées par TREK-1 et TASK. En (C) l'étirement de la membrane n'a pas d'effet sur l'activité du canal TASK (configuration cellule attachée). Le "patch" est maintenu à 50mV. En (D) : les canaux TREK-1 sont silencieux au repos et ouvert lors d'une tension de la membrane. Le "patch" est maintenu à +50mV. En (E) histogramme donnant l'amplitude de l'activité canal engendrée par la tension de la membrane et illustrée en (G). En (F) : relation courant-potentiel en canal unique de TREK-1 (n=6). La conductance de 81 pS a été calculée entre 0 et 80 mV. En (G) : activation de TREK-1 par étirement de la membrane (30 mm Hg) dans la configuration "inside-out". Le potentiel de maintien est 100 mV. En (H) : effet produits par des tensions de plus en plus importantes (5 sec de durée) sur la relation courant-potentiel d'un "patch" exprimant TREK-1. En (I) : courbe dose-effet de l'activation de TREK-1 par la tension (n=6) . La courbe est tracée en suivant les points expérimentaux suivant la relation de Boltzmann. - la figure 7 montre l'activation de TRAAK par l'étirement de la membrane cellulaire dans les cellules COS transfectées. Le courant est enregistré à 0 mV dans la configuration "inside-out". Les dépressions appliquées via la pipette d'enregistrement sont indiquées sur la droite des traces. - la figure 8 montre l'activation de TREK-1 par l'acide arachidonique dans les cellules COS transfectées. En (A) : l'activité de TREK-1 est enregistrée dans la configuration cellule attachée. Le "patch" est stimulé par une rampe de potentiel durant 800 msec toutes les 5 sec. Les courants sont mesurés à 80 mV. Les applications d'acide arachidonique (AA, 10au) sont indiquées par les barres horizontales. Au cours de l'expérience, le "patch" a été stimulé par des tensions de 50 mm Hg (indiquées par des flèches). A 9 min, le "patch" a été excisé dans la configuration "inside-out". En (B) : relations courant-potentiel qui correspondent à l'expérience illustrée en (A). En (C) : activité de TREK-1 dans la configuration cellule attachée avec 10 AM AA dans la pipette. La rampe de potentiel dure 800 msec et les courants sont mesurés à 80mV. En (D) : relations courant-potentiel en canal unique au moment où la pipette est posée sur la membrane ou après 20 min et 1 min après avoir excisé le "patch" dans la configuration 'inside-out". En (E) effet de l'AA (10au) sur le courant TREK-1 enregistré en cellule entière. Le courant est mesuré à 80mV. En (F) : 1'AA est sans effet sur le courant TREK-1 mesuré en cellule entière lorsqu'il est dans la pipette. Le courant est mesuré 30 min après avoir rompu le "patch" (trace contrôle) par une rampe de potentiel de 800 msec. Le courant est ensuite mesuré après une application d'AA de 1 min dans le milieu externe (trace AA). - la figure 9 montre l'effet de l'acide arachidonique et d'autres acides gras sur le canal TRAAK exprimé dans des cellules COS transfectées. En (a) relations courant-potentiel obtenues à partir de rampes de potentiel de 500 msec allant de -150 à +50 mV, après application d'AA (10 ,uM) et après lavage. En inset sont représentés les courants déclenchés par des sauts de potentiel de -130 à +50 mV par incrément de 20 mV. Le potentiel de maintien est -80mV. En (b) : relation doseeffet de l'activation de TRAAK par 1'AA. En (c) relations courant-potentiel obtenus comme en (a) dans la configuration "outside-out". En inset est montré l'effet de l'AA à 20 mV. En (e) : histogramme représentant le coefficient d'augmentation des courants obtenus après application de différents acides gras (10,ut). En (f) histogramme montant la valeur des courants enregistrés dans la configuration de la cellule entière avant et après application d'AA sur des cellules transfectées transitoirement par TWIK-1, TASK, TREK-1 et TRAAK et sur des cellules transfectées de façon stable par TRAAK. Le coefficient d'augmentation est indiqué dans chaque cas. - la figure 10 montre l'effet du riluzole sur les courants TREK-1 et TRAAK désigné TREK-2. Les relations courant-potentiel sont obtenus comme dans la figure 9a avant et après l'application de riluzole (100ut) sur des cellules COS transfectées. En inset sont montrés les effets du riluzole sur les courants enregistrés dans la configuration "outside-out". I - Clonage, structure primaire et distribution tissulaire de TRAAK. La séquence du canal TWIK-1 a été utilisée pour rechercher des séquences homologues dans les banques publiques de données d'ADN (Genbank et EMBL) en mettant en oeuvre le programme d'alignement BLAST. Il a ainsi été identifié une séquence exprimée TAG humaine qui a servi à cribler une banque d'ADNc de cerveau de souris. Plusieurs clones ont été isolés et caractérisés. Le plus long a été séquencé. Les caractéristiques suivantes ont été mises en évidence - les ADNc isolés contiennent une phase ouverte de lecture de 1197 nucléotides codant pour un polypeptide de 398 résidus. Les séquences nucléotidiques et protéiques sont montrées dans la figure 1. - cette protéine contient 4 segments transmembranaires potentiels et deux domaines P. Elle possède donc la même structure générale que les canaux TWIK-1, TREK-1 et TASK. De plus, elle présente des homologies de séquence avec ces canaux : environ 20-25% d'identité avec TWIK-1 et TASK et 38% avec TREK-1. En dehors des domaines P qui sont présents dans tous les canaux potassium clonés, elle n'a pas d'homologie de séquence significative avec les canaux de type Shaker et IRK. Elle appartient donc à la famille TWIK-1 et son homologue le plus proche est TREK-1. Ces relations apparaissent dans la figure 2 au niveau de l'alignement des séquences protéiques ainsi que dans le dendrogramme qui est déduit de cet alignement. TRAAK et TREK-1 forment donc une sous-classe structurale au sein de la famille TWIK-1. - les séquences de différents oligonucléotides ont été déduits à partir de la séquence de TRAAK. Ces oligonucléotides ont permis par RT-PCR d'étudier la distribution du transcrit codant TRAAK dans les tissus de souris adulte. Comme le montre la figure 3, TRAAK est exclusivement exprimé dans des tissus neuronaux : cerveau, cervelet, moelle épinière et rétine. Cette distribution est très différente de celle de son plus proche homologue qui est le canal TREK-1. Celui a une distribution quasi ubiquitaire et est présent aussi bien dans les tissus excitables que dans les tissus non-excitables. II - Expression fonctionnelle de TRAAK. Pour l'étude fonctionnelle, la séquence codante de TRAAK a été insérée dans le vecteur pEXO et un ARN complémentaire (ARNc) a été synthétisé à partir de cette construction et injecté dans des ovocytes de Xénope. Pour l'expression dans les cellules COS, la séquence de TRAAK a été sous-clonée dans un vecteur d'expression sous le contrôle d'un promoteur eucaryote et transfectée dans les cellules. Un courant noninactivant absent des ovocytes et des cellules témoins a été mesuré par la technique de potentiel imposé comme représenté à la figure 4. L'activation est instantané et ne peut être résolue car elle est masquée par la décharge capacitive du courant enregistré au début du saut de potentiel. La relation courant-potentiel rectifie dans le sens sortant lorsque la concentration externe en K+ est égale à 2 mM. Des courants entrants sont observés lorsque la concentration externe en K+ est augmentée. Quelque soit cette concentration, les courbes courant-potentiel suivent parfaitement la relation de Goldman-Hodgkin-Katz. Cela démontre que les courants TRAAK n'ont pas de rectification autre que celle qui est due aux concentrations dissymétriques de K+ de chaque côté de la membrane et que TRAAK est un canal qui n'est pas dépendant du potentiel. Le canal TRAAK est sélectif au potassium. Le renversement du potentiel des courants suit le potentiel d'équilibre du K+ et le changement par 10 de la concentration en K+ conduit à un changement de la valeur d'inversion du potentiel conforme à celle prédite par l'équation de Nernst (48.7±0.7 mV par 10, n=4). Les propriétés de TRAAK, absence de cinétiques d'activation et d'inactivation aussi bien que son ouverture à tous les potentiels de membrane, sont des caractéristiques des canaux potassium dits de fuite. Comme prévu pour des canaux de ce type, son expression dans les oocytes est associée à une forte polarisation. Le potentiel de repos de la membrane passe de -43+2,4 mV, (n=7), dans les oocytes de contrôle à -88+1,4mV, (n=23)dans les oocytes transfectés, une valeur proche du potentiel d'équilibre du potassium. TRAAK a été aussi exprimé dans les cellules COS-M6 transfectées. Dans ce système aussi, les courants TRAAK sont instantanés et ne s'inactivent pas. L'enregistrement des "patch" en configuration outside-out" indique une conductance unitaire de TRAAK égale à 45,5 + 3,7 pS (n = 10). III - TREK-1 et TRAAK sont des canaux mécanosensibles. Il a été établi que la sous-classe structurale formée par les canaux K+ TREK-1 et TRAAK est associée à des propriétés électrophysiologiques uniques parmi les canaux K+ de type TWIK. Les canaux TREK-1 et TRAAK sont en effet activés par une tension appliquée à la membrane plasmique. Cette tension est obtenue soit indirectement en changeant llosmolarité du milieu externe et donc le volume de la cellule soit plus directement en appliquant une dépression dans la pipette d'enregistrement. Les caractéristiques suivantes ont été mises en évidence - la figure 5 démontre que l'expression du canal TREK-1 dans des ovocytes de Xénope qui sont maintenus dans un milieu hypotonique induit des courants instantanés et non-inactivants. Quand l'osmolarité du milieu externe est augmentée en y ajoutant du mannitol, une importante diminution de l'amplitude du courant TREK-1 est observée ce qui démontre une sensibilité du canal au volume cellulaire. Le canal TASK lui n'est pas affecté par l'osmoîarité du milieu externe. - la figure 6 démontre que le canal TREK-1 est mécanosensible. Dans des cellules COS transfectées et sous des conditions de repos, l'activité de TREK-1 est indétectable dans la configuration cellule attachée alors que l'activité de TASK est facilement mesurable dans les mêmes conditions. Cependant, une dépression appliquée à la membrane par l'intermédiaire de la pipette d'enregistrement déclenche une ouverture du canal TREK-1. Un tel effet n'est pas vu avec TASK. L'activation de TREK-1 induit par la tension est également obtenu dans la configuration "inside-out" c'est à dire lorsque le "patch" est excisé et que la face interne de la membrane se retrouve en contact avec le milieu externe. Dans cette configuration, l'activité du canal est également absente ou très faible si on n'applique pas de tension à la membrane. L'effet de la tension est graduée et une activation qui est égale à la moitié de la valeur maximale est détectée pour une dépression équivalente à 23 mm de mercure. D'autre part, la figure 6h montre que l'activation induite par l'étirement est indépendante du potentiel de membrane. - la figure 7 montre également que TRAAK est un canal activé par l'étirement. En absence de dépression ou pour de faibles valeurs, le canal TRAAK est inactif. Pour des valeurs plus élevées, le canal est activé et un courant est enregistré. Durant l'application de la dépression, une diminution de l'activité du canal est observable comme dans le cas de TREK-1. IV - TREK-1 et TRAAK sont activés Dar l'acide arachidonique et d'autres acides aras solvinsaturés. L'activation des canaux TREK-1 et TRAAK par étirement mécanique de la membrane est mimée par l'application d'acide arachidonique et par l'application d'autres acides gras polyinsaturés, mais pas par l'application d'acides gras saturés. Les caractéristiques suivantes ont été mises en évidence - la figure 8 démontre que TREK-1 est activé par l'acide arachidonique (AA). L'application d'AA sur des cellules témoins (CD8) n'a pas d'effet. Les activations obtenues par étirement de la membrane et par application d'AA sont similaires en amplitude mais ne sont pas additives. Les deux types d'activation sont réprimées dans la configuration cellule attachée. Quand la pipette d'enregistrement contient de 1'AA, l'excision du "patch" dans la configuration "inside-out" induit de façon reproductible une augmentation importante de l'activité de TREK-1. De la même manière, l'amplitude de l'activation induite par une dépression appliquée dans la pipette d'enregistrement est plus importante lorsque le "patch" est excisé. Finalement, il a été observé qu'en cellule entière, 1'AA interne n'active pas TREK-1. Quand la cellule est dialysée pour des périodes aussi longues que 30 minutes, aucune activation du canal par 1'AA interne n'a lieu bien que 1'activation soit observée quelques secondes après l'application d'AA dans le milieu externe. Ces résultats indiquent que l'AA active TREK-1 seulement lorsqu'il est appliqué sur la face externe de la membrane. - la figure 9 démontre que le canal TRAAK est activé par l'AA de la même manière que TREK-1. L'activation est réversible et dépendante de la concentration appliquée. Cette activation est aussi observée dans la configuration "outside -out". L'activation de TRAAK par l'AA n'est pas prévenue quand la perfusion d'AA contient un mélange d'inhibiteurs du métabolisme de l'AA (acide nordihydroguaiaretique pour la lipoxygénase, lindomethacine pour la cyclooxygénase, clotrimazole pour époxygénase et l'ETYA qui inhibe l'ensemble des voies de métabolisation de 1'AA, tous à 10mM) . Dans ces conditions, l'augmentation du courant induit par AA est de 6.6±0,5 fois (n=3)(à +50mV). Une augmentation de 1.7+0.4 fois (n=3) du courant de potassium de fond peut être observé après l'administration d'un coktail d'inhibiteurs en l'absence d'AA Ce résultat démontre que l'activation par 1'AA ne requière pas la transformation de 1'AA en eicosanoïdes. - la figure 9 démontre également que des acides gras autres que l'AA activent le canal. Cette activation est spécifique des acides gras cis polyinsaturés et est observée avec les acides oléique (C18A9) , linoléique (C18A9,12), linolénique (C18A9, 12,15), eicosapentaenoique (EPA, C20A5,8,11,14,17) et docosohexaenoiques (DOHA, C20A4,7,10,13,16,19) à une concentration de 10 mM. Les acides saturés tels que les acides palmitique (C16), stéarique (C18) et arachidique (C20) sont quant à eux sans effet. Les dérivés de 1'AA et de l'acide docosohexaenoique où la fonction carboxylique est substituée par une fonction alcool (AA-OH) ou methyl ester (AA-ME, DOHA-ME) sont également inactifs sur TRAAK. L'effet de 1'AA sur TRAAK est observable aussi bien sur des cellules transfectées de façon transitoire que de façon stable (3 lignées de cellules stables indépendantes ont été testées). - finalement, la figure 9 démontre que l'effet d'activation par 1AA est spécifique de TREK-1 et TRAAK. Aucun effet du même type n'est observé sur les canaux TWIK-1 et TASK. Dans les oocytes, TRAAK est insensible aux agents bloquant des canaux potassium classiques tels que le tétraéthylammonium (TEA, lmM), la 4-aminopyridine (4 AP, lmM) et la quinine (100 mM). Inversement, Ba2+ (lmM) bloque 56,7 i 4,6 %, n=5 du courant TRAAK à +40 mV. V - Les canaux TREK-1 et TRAAK sont activés par un agent neuroprotecteur : le riluzole. Le riluzole est un agent neuroprotecteur qui est utilisé pour prolonger la survie des malades atteint de sclérose latérale amyotrophique. Le figure 10 démontre que cet agent pharmacologique est un ouvreur des canaux TREK-1 et TRAAK. TREK-1 et TRAAK sont les premiers canaux ioniques dont l'activité est stimulée par le riluzole. LISTE DE SÉQUENCES (1) INFORMATION GÉNÉRALES: (iii) NOMBRE DE SEQUENCES: 2 (2) INFORMATION POUR LA SEQ ID NO:1 (i) CARACTRERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 1794 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRIN: double (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (ix) CARACTERISTIQUES (A) NOM/CLE: TRAAK (B) EMPLACEMENT: de 284 à 1477 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCES: SEQ ID NO:1 CCACGCGTCC GCGGACGCGT GGGTCGCCCA CGCGTCCGGT GGCGGCTGTC CTGAGCCCCG 60 GGCCAGCTGA TGTCCAGGTT AGGGCAGCGT TGGGGCCCCA ATCCCAGCCT GGAAGGTTGG 120 ACTTCACGTC GACCCTTCTC TGAGTCTTCT GCCACTCACT GGCCTGGACA AGACAGCATT 180 GGGGAGCCCA GAGGCTGCAG GTGCAGTGAC CACTGCTCCC CAGGAGCTCC CTGCTCCTTC 240 TTCCCAGGCA GGAAGTGGAG CTGGACCTGC CTCTGGAAGG ACC ATG CGC AGC ACC 295 Met Arg Ser Thr 1 ACA CTC CTG GCT CTG CTG GCA CTG GTG CTG CTT TAC TTG GTA TCT GGG 343 Thr Leu Leu Ala Leu Leu Ala Leu Val Leu Leu Tyr Leu Val Ser Gly 5 10 15 20 GCT CTA GTG TTC CAG GCT CTG GAG CAG CCT CAC GAG CAG CAG GCT CAG 391 Ala Leu Val Phe Gin Ala Leu Glu Gln Pro His Glu Gln Gln Ala Gln 25 30 35 AAG AAA ATG GAT CAT GGC CGA GAC CAG TTT CTG AGG GAC CAT CCC TGT 439 Lys Lys Met Asp His Gly Arg Asp Gln Phe Leu Arg Asp His Pro Cys 40 45 50 GTG AGC CAG AAG AGC CTG GAG GAT TTC ATC AAG CTC CTG GTT GAA GCC 487 Val Ser Gln Lys Ser Leu Glu Asp Phe Ile Lys Leu Leu Val Glu Ala 55 60 65 CTG GGA GGG GGC GCA AAC CCA GAA ACC AGC TGG ACC AAT AGC AGC AAC 535 Leu Gly Gly Gly Ala Asn Pro Glu Thr Ser Trp Thr Asn Ser Ser Asn 70 75 80 CAC TCA TCA GCT TGG AAC CTG GGC AGC GCC TTC TTT TTC TCG GGG ACC 583 His Ser Ser Ala Trp Asn Leu Gly Ser Ala Phe Phe Phe Ser Gly Thr 85 90 95 100 ATC ATC ACT ACC ATC GGC TAT GGC AAT ATA GTC TTA CAC ACA GAT GCC 631 Ile Ile Thr Thr Ile Gly Tyr Gly Asn Ile Val Leu His Thr Asp Ala 105 110 115 GGG CGT CTC TTT TGT ATC TTC TAT GCA CTG GTG GGG ATC CCA CTG TTC 679 Gly Arg Leu Phe Cys Ile Phe Tyr Ala Leu Val Gly Ile Pro Leu Phe 120 125 130 GGG ATG CTG CTG GCG GGA GTC GGG GAC CGG CTG GGC TCC TCT CTG CGC 727 Gly Met Leu Leu Ala Gly Val Gly Asp Arg Leu Gly Ser Ser Leu Arg 135 140 145 CGG GGC ATC GGC CAC ATC GAA GCA ATC TTC TTG AAG TGG CAT GTG CCA 775 Arg Gly Ile Gly His Ile Glu Ala Ile Phe Leu Lys Trp His Val Pro 150 155 160 CCG GGG CTG GTG AGA AGT CTG TCC GCA GTG CTC TTC CTG CTG ATC GGC 823 Pro Gly Leu Val Arg Ser Leu Ser Ala Val Leu Phe Leu Leu Ile Gly 165 170 175 180 TGC CTG CTC TTT GTC CTC ACT CCT ACC TTC GTG TTC TCC TAC ATG GAG 871 Cys Leu Leu Phe Val Leu Thr Pro Thr Phe Val Phe Ser Tyr Met Glu 185 190 195 AGC TGG AGC AAG TTA GAA GCC ATC TAC TTT GTT ATA GTG ACT CTC ACC 919 Ser Trp Ser Lys Leu Glu Ala Ile Tyr Phe Val Ile Val Thr Leu Thr 200 205 210 ACT GTA GGC TTT GGC GAT TAT GTA CCC GGC GAT GGC ACC GGG CAG AAC 967 Thr Val Gly Phe Gly Asp Tyr Val Pro Gly Asp Gly Thr Gly Gln Asn 215 220 225 TCT CCA GCC TAC CAG CCG CTG GTG TGG TTC TGG ATC TTG TTT GGC CTA 1015 Ser Pro Ala Tyr Gln Pro Leu Val Trp Phe Trp Ile Leu Phe Gly Leu 230 235 240 GCC TAC TTC GCC TCA GTG CTC ACC ACC ATC GGC AAC TGG TTG CGA GCA 1063 Ala Tyr Phe Ala Ser Val Leu Thr Thr Ile Gly Asn Trp Leu Arg Ala 245 250 255 260 GTG TCC CGC CGA ACT CGG GCA GAG ATG GGT GGC CTA ACG GCA CAG GCT 1111 Val Ser Arg Arg Thr Arg Ala Glu Met Gly Gly Leu Thr Ala Gln Ala 265 270 275 GCT AGC TGG ACC GGC ACA GTG ACA GCG CGA GTG ACC CAG CGA ACT GGG 1159 Ala Ser Trp Thr Gly Thr Val Thr Ala Arg Val Thr Gln Arg Thr Gly 280 285 290 CCC AGC GCC CCG CCG CCA GAG AAG GAG CAA CCA CTC CTG CCC TCC TCT 1207 Pro Ser Ala Pro Pro Pro Glu Lys Glu Gln Pro Leu Leu Pro Ser Ser 295 300 305 TTG CCG GCA CCG CCT GCT GTT GTT GAG CCA GCC GGC AGG CCC GGC TCC 1255 Leu Pro Ala Pro Pro Ala Val Val Glu Pro Ala Gly Arg Pro Gly Ser 310 315 320 CCT GCA CCC GCA GAG AAG GTT GAG ACT CCG TCC CCG CCC ACG GCC TCA 1303 Pro Ala Pro Ala Glu Lys Val Glu Thr Pro Ser Pro Pro Thr Ala Ser 325 330 335 340 GCT CTG GAT TAC CCC AGT GAG AAT CTG GCC TTC ATC GAC GAG TCC TCA 1351 Ala Leu Asp Tyr Pro Ser Glu Asn Leu Ala Phe Ile Asp Glu Ser Ser 345 350 355 GAC ACG CAG AGT GAG CGT GGC TGT GCC CTG CCT CGG GCT CCT CGG GGT 1399 Asp Thr Gln Ser Glu Arg Gly Cys Ala Leu Pro Arg Ala Pro Arg Gly 360 365 370 CGC CGC CGA CCC AAC CCA TCC AAA AAG CCT TCC AGA CCC CGG GGT CCT 1447 Arg Arg Arg Pro Asn Pro Ser Lys Lys Pro Ser Arg Pro Arg Gly Pro 375 380 385 GGG CGA CTC CGA GAC AAG GCC GTG CCG GTG TAG GGGCAGGATC 1490 Gly Arg Leu Arg Asp Lys Ala Val Pro Val * 390 395 398 TCTGGACCCG GATCCCACGC CAGGGCTTTC GCTCTTGCTG ATGCTCAGGC ATGCTTGGCT 1550 TATTTGACCA AAGAGCCGTC CCTCTTTTGT TCCACGTGGT TGCAACCCTG ACAGGAGTCC 1610 AGTGGTTGCC AAATGCCACC GCTCTTCCCT GGCTGGTTCT TCACATCCAA TCATTTCCAA 1670 AGCCCACCAT CCAAGGCTTT CTGCCTCGCT CCCCCTGCCGG TTTTGACCCT CACACCTCAC 1730 AACTGTGCCT CAAAACCTGC ACCAATAAAA CAAAAACTCT GAAAAAAAAA AAAAAAAAAA 1790 AAAA 1794 (2) INFORMATION POUR LA SEQ ID NO:2 (i) CARACTRERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: ... paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRIN: double (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (ix) CARACTERISTIQUES (A) NOM/CLE: TREK-1 (B) EMPLACEMENT: de 484 à 1596 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCES: SEQ ID NO:2 AGAGCGGCGA GGCGAGGGGA GAGTGGTGCT ACGGGCCAGG CGGGCCACCC CGGGCCACAC 60 CCCCACCTTG CGGGCGCCCG GCGGGGCTCG AGCCAGGCGG GGCGCCTCAC AAAGACATGC 120 GAAGAGGGGC TGCAGTGATC ACCCCCTCGC TGAGCCCCGG GGCAGAGCCC AGCCGCCGGC 180 CGAGCGCACG GAGCCACGGG CCGAGCGCAC CCAGGGCCCG CGCGGGACCC CAGGCGGCCA 240 CGCAATCGGG GTGACCCATC GCGCGCGGGG GCGTCGTCGT CCGATCCCAA CTTGGCCTCG 300 GCCTCGCCCT CTGCCCAGCC TGCCACCGCT GGTGTCCTCT CCTTCCGGCG ATTTCGTTTC 360 TTCTCACGCT CCCCCCTCTA TACCCCTCCC GCCTCCAGCC CCGCTCTCCC CACCTTGTAA 420 AACAAAGCCG GGGAAAATGC CTACCCGTGC AGCTCGGAGC GCGCAGCCCG TCTTGGAATA 480 AGG ATG GCG GCC CCT GAC TTG CTG GAT CCC AAG TCT GCT GCT CAG AAC 528 Met Ala Ala Pro Asp Leu Leu Asp Pro Lys Ser Ala Ala Gln Asn 1 5 10 15 TCC AAA CCG AGG CTC TCA TTC TCT TCA AAA CCC ACC GTG CTT GCT TCC 576 Ser Lys Pro Arg Leu Ser Phe Ser Ser Lys Pro Thr Val Leu Ala Ser 20 25 30 CGG GTG GAG AGT GAC TCG GCC ATT AAT GTT ATG AAA TGG AAG ACA GTC 624 Arg Val Glu Ser Asp Ser Ala Ile Asn Val Met Lys Trp Lys Thr Val 35 40 45 TCC ACG ATT TTC CTG GTG GTC GTC CTC TAC CTG ATC ATC GGA GCC GCG 672 Ser Thr Ile Phe Leu Val Val Val Leu Tyr Leu Ile Ile Gly Ala Ala 50 55 60 GTG TTC AAG GCA TTG GAG CAG CCT CAG GAG ATT TCC CAG AGG ACC ACC 720 Val Phe Lys Ala Leu Glu Gln Pro Gln Glu Ile Ser Gln Arg Thr Thr 65 70 75 ATT GTG ATC CAG AAG CAG ACC TTC ATA GCC CAG CAT GCC TGC GTC AAC 768 Ile Val Ile Gln Lys Gin Thr Phe Ile Ala Gln His Ala Cys Val Asn 80 85 90 95 TCC ACC GAG CTG GAC GAA CTC ATC CAG CAA ATA GTG GCA GCA ATA AAC 816 Ser Thr Glu Leu Asp Glu Leu Ile Gln Gln Ile Val Ala Ala Ile Asn 100 105 110 GCA GGG ATT ATC CCC TTA GGA AAC AGC TCC AAT CAA GTT AGT CAC TGG 864 Ala Gly Ile Ile Pro Leu Gly Asn Ser Ser Asn Gln Val Ser His Trp 115 120 125 GAC CTC GGA AGC TCT TTC TTC TTT GCT GGT ACT GTT ATC ACA ACC ATA 912 Asp Leu Gly Ser Ser Phe Phe Phe Ala Gly Thr Val Ile Thr Thr Ile 130 135 140 GGA TTT GGA AAC ATC TCC CCA CGA ACT GAA GGT GGA AAA ATA TTC TGC 960 Gly Phe Gly Asn Ile Ser Pro Arg Thr Glu Gly Gly Lys Ile Phe Cys 145 150 155 ATC ATC TAT GCC TTG CTG GGA ATT CCC CTC TTT GGC TTT CTA CTG GCT 1008 Ile Ile Tyr Ala Leu Leu Gly Ile Pro Leu Phe Gly Phe Leu Leu Ala 160 165 170 175 GGG GTT GGT GAT CAG CTA GGA ACT ATA TTT GGA AAA GGA ATT GCC AAA 1056 Gly Val Gly Asp Gln Leu Gly Thr Ile Phe Gly Lys Gly Ile Ala Lys 180 185 190 GTG GAA GAC ACA TTT ATT AAG TGG AAT GTT AGT CAG ACG AAG ATT CGT 1104 Val Glu Asp Thr Phe Ile Lys Trp Asn Val Ser Gln Thr Lys Ile Arg 195 200 205 ATC ATC TCC ACC ATC ATC TTC ATC CTG TTT GGC TGT GTC CTC TTT GTG 1152 Ile Ile Ser Thr Ile Ile Phe Ile Leu Phe Gly Cys Val Leu Phe Val 210 215 220 GCT CTC CCT GCG GTC ATA TTC AAG CAC ATA GAA GGC TGG AGC GCC CTG 1200 Ala Leu Pro Ala Val Ile Phe Lys His Ile Glu Gly Trp Ser Ala Leu 225 230 235 GAC GCT ATC TAT TTT GTG GTT ATC ACT CTG ACG ACC ATT GGA TTT GGA 1248 Asp Ala Ile Tyr Phe Val Val Ile Thr Leu Thr Thr Ile Gly Phe Gly 240 245 250 255 GAC TAC GTG GCA GGT GGA TCA GAC ATT GAA TAT CTG GAC TTC TAC AAG 1296 Asp Tyr Val Ala Gly Gly Ser Asp Ile Glu Tyr Leu Asp Phe Tyr Lys 260 265 270 CCT GTG GTG TGG TTC TGG ATC CTC GTT GGG CTG GCC TAC TTT GCA GCT 1344 Pro Val Val Trp Phe Trp Ile Leu Val Gly Leu Ala Tyr Phe Ala Ala 275 280 285 GTT CTG AGC ATG ATT GGG GAC TGG CTA CGG GTG ATC TCT AAG AAG ACG 1392 Val Leu Ser Met Ile Gly Asp Trp Leu Arg Val Ile Ser Lys Lys Thr 290 295 300 AAG GAA GAG GTG GGA GAG TTC AGA GCG CAT GCC GCT GAG TGG ACA GCC 1440 Lys Glu Glu Val Gly Glu Phe Arg Ala His Ala Ala Glu Trp Thr Ala 305 310 315 AAT GTC ACG GCC GAG TTC AAG GAA ACG AGG AGG CGG CTG AGC GTG GAG 1488 Asn Val Thr Ala Glu Phe Lys Glu Thr Arg Arg Arg Leu Ser Val Glu 320 325 330 335 ATC TAC GAC AAG TTC CAG CGT GCC ACA TCC GTG AAG CGG AAG CTC TCC 1536 Ile Tyr Asp Lys Phe Gln Arg Ala Thr Ser Val Lys Arg Lys Leu Ser 340 345 350 GCA GAG CTG GCG GGC AAC CAC AAC CAG GAA CTG ACT CCG TGT ATG AGG 1584 Ala Glu Leu Ala Gly Asn His Asn Gln Glu Leu Thr Pro Cys Met Arg 355 360 365 ACC TGT CTG TGA ACCACCTGAC CAGCGAGAGG GAAGTCCTGC CTCCCTTGCT 1636 Thr Cys Leu * 370 GAAGGCTGAG AGCATCTATC TGAACGGTCT GACACCACAC TGTGCTGGTG AGGACATAGC 1696 TGTCATTGAG AACATGAAGT AGCCCTCTCT TGGAAGAGTC TGAGGTGGAG CCATAGGGAA 1756 GGGCTTCTCT AGGCTCTTTG TGACTGTTGC CGGTAGCATT TAAACATTGT GCATGGTGAC 1816 CTCAAAGGGA AAGCAAATAG AAAACACCCA TCTGGTCACC TTACATCCAG GGAGGGTGTT 1876 GTCCCGAGGC GGCACTCTGA GGATGCCGTG TGCTGTCCGC TGAGTGCTGA GTGATGGACA 1936 GGCAGTGTCT GATGCCTTTT GTGCCCAGAC TGTTTCCCCT CCCCCTCTCT CCTAACG 1993 REVENDICATIONS 1) Protéine purifiée constituant un canal potassium mécanosensible activé par les acides gras polyinsaturés notamment l'acide arachidonique et par le riluzole. 2) Protéine selon la revendication 1 dont la séquence en acides aminés est représentée dans la liste de séquences en annexe sous le numéro SEQ ID No:l ou un dérivé fonctionnellement équivalent de cette protéine. 3) Protéine selon l'une des revendications 1 ou 2, dont la séquence en acides aminés est représentée dans la liste de séquences en annexe sous le numéro SEQ ID No:2. 4) Anticorps poly ou monoclonaux dirigés contre au moins une protéine constituant un canal ionique selon l'une quelconque des revendications 1 à 3. 5) Molécule d'acide nucléique purifiée comprenant ou constituée par une séquence nucléique codant pour une protéine selon l'une quelconque des revendications 1 à 3. 6) Molécule d'acide nucléique selon la revendication 5 comprenant la séquence comprise entre les nucléotides 284 et 1477 de la séquence représentée dans la liste de séquences en annexe sous le numéro SEQ ID NO:1 ou sa séquence complémentaire. 7) Molécule d'acide nucléique selon la revendication 5 comprenant la séquence comprise entre les nucléotides 484 et 1596 de la séquence représentée dans la liste de séquences en annexe sous le numéro SEQ ID NO:2 ou sa séquence complémentaire. 8) Vecteur comprenant au moins une molécule d'acide nucléique selon l'une quelconque des revendications 5 à 7 avantageusement associé à des séquences de contrôle. 9) Procédé de production d'une protéine constituant un canal potassium selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisé en ce qu'il consiste - à transférer une molécule d'acide nucléique selon l'une des revendications 5 à 7 ou un vecteur selon la revendication 8 dans un hôte cellulaire, - à cultiver ledit hôte cellulaire dans des conditions permettant la production de la protéine constituant ledit canal potassium, - à isoler, par tous moyens appropriés les protéines constituant lesdits canaux. 10) Procédé d'expression d'un canal potassium selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisé en ce qu'il consiste - à transférer une molécule d'acide nucléique selon l'une des revendications 5 à 7 ou un vecteur selon la revendication 8 dans un hôte cellulaire, - à cultiver ledit hôte cellulaire dans des conditions permettant la production desdits canaux potassium. 11) Hôte cellulaire obtenu par un procédé selon la revendication 10. 12) Procédé de criblage de substances capables de moduler l'activité de canaux potassium mécanosensibles activés par les acides gras polyinsaturés notamment l'acide arachidonique et par le riluzole selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisé en ce que l'on met en contact des quantités variables d'une substance à tester avec des cellules selon la revendication 11, puis l'on mesure, par tous moyens appropriés, les effets éventuels de ladite substance sur les courants desdits canaux. 13) Procédé selon la revendication 12 appliqué au criblage de substances capables de prévenir ou traiter des maladies du coeur ou du système nerveux chez un sujet humain ou animal. 14) Utilisation d'une substance chimique ou biologique capable de modifier les courants d'un canal potassium selon l'une quelconque des revendications 1 à 3 pour la préparation d'un médicament utile pour prévenir ou traiter des maladies du coeur ou du système nerveux chez un sujet humain ou animal. 15) Utilisation selon la revendication 14, pour la préparation d'un médicament utile pour prévenir ou traiter les pathologies cardiaques et vasculaires, les neurodégénérescences, particulièrement celles qui sont associées aux ischémies et aux anoxies, les pathologies endocriniennes associées à des anomalies dans la sécrétion d'hormones, les pathologies musculaires 16) Composition pharmaceutique comprenant comme principe actif au moins une protéine constituant un canal potassium selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, ou un anticorps selon la revendication 4, ou une molécule d'acide nucléique selon l'une des revendications 5 à 7 ou un vecteur selon la revendication 8, éventuellement associé à un véhicule physiologiquement acceptable. NOUVELLE FAMILLE DE CANAUX POTASSIUM DE MAMMIFERES MECANOSENSIBLES ET ACTIVES PAR LES ACIDES GRAS POLYINSATURES ET LEUR UTILISATION NOTAMMENT POUR LE CRIBLAGE DE DROGUES. La présente invention concerne une nouvelle famille de canaux potassium mécanosensibles activés par les acides gras polyinsaturés notamment l'acide arachidonique et par le riluzole. L'invention se rapporte aussi au procédé de criblage de substance suceptible de moduler les courants ioniques desdits canaux.