Brevet FR2769921A1 — publié le 19990423

Moyens de documentation de répertoires en immunorécepteurs NKR et/ou en irtirnunorécepteurs contreparties activatrices ou non inhibitrices d'immunorécepteurs NKR La présente invention concerne des moyens permettant de documenter les répertoires d'un individu humain ou animal en immunorécepteurs NKR (Natural Killer Receptor) du type des immunoglobulines ou du type des lectines, et en immunorécepteurs contreparties activatrices, ou à tout le moins non inhibitrices, d'immunorécepteurs NKR Elle vise également leurs applications biologiques. Les fonctions immunitaires d'un homme ou d'un animal sont définies par plusieurs catégories de molécules hautement diversifiées, telles que notamment le système des groupes sanguins AD, la famille des molécules du CMH (Complexe Majeur d'Histocompatibilité, appelé chez l'homme, système HLA -Human Leukocyte Antigen-), la famille des récepteurs pour l'antigène des lymphocytes T (TCR) et des lymphocytes B ( BCR) . L'ensemble des molécules qu'un individu adulte exprime, ou est capable d' exprimer, pour chacune de ces différentes familles constitue, exception faite des vrais jumeaux, un répertoire évolutif qui lui est propre et qui intervient dans la reconnaissance du soi ou du non-soi. D' autres grands répertoires ont été plus récemment identifiés. I1 s'agit du répertoire en récepteurs NKR de type immunoglobuline et du répertoire en récepteurs NKR de type lectine. Les recepteurs NKR de type immunoglobuline comprennent les récepteurs KIR (Killer cell Inhibitory Receptor) tels que notamment les récepteurs p58.l, p58.2, p70. INH, pl40. INH. Les récepteurs NKR de type lectine comprennent les récepteurs inhibiteurs NKG2 tels que notamment les récepteurs NKG2A et NKG2B L'ensemble de ces récepteurs NKR sont à fonction inhibitrice. Des récepteurs qui leur sont hautement homologues, en particulier au niveau extracytoplasmique, assurent toutefois des fonctions activatrices, ou à tout le moins non inhibitrices : il s'agit des récepteurs KAR (Killer cell Activatory Receptor) homologues aux récepteurs KIR, et des récepteurs NKG2C, NKG2D, NKG2E et NKG2F homologues aux récepteurs NKG2A et NKG2 B Les récepteurs contreparties activatrices, ou à tout le moins non inhibitrices, de récepteurs inhibiteurs NKR sont ci-après désignés, par souci de fluidité, contreparties de NKR Les récepteurs NKR et les récepteurs contreparties de NKR sont naturellement exprimés par les cellules NK et par des sous-populations de cellules T. Plusieurs de ces récepteurs peuvent être exprimés par une même cellule. Tous ces récepteurs, qu'ils soient inhibiteurs (i.e. NKR) ou qu ils soient activateurs ou non inhibiteurs (î.e. contreparties de NKR), ont en commun d'avoir pour ligand des molécules qui ne sont pas dérivées d'antigène : les ligands des récepteurs NKR et des récepteurs contreparties de NKR sont des molécules du CMH de classe I. La reconnaissance de son ligand par un récepteur NKR déclenche la transduction à la cellule d'un message visant à inhiber son activité, e.g. diminution ou arrêt de la cytolyse, de la sécrétion de cytokines, alors que la reconnaissance de son ligand par un récepteur contrepartie de NKR y induit un message activateur, ou à tout le moins non inhibiteur. A la résultante entre récepteurs NKR et récepteurs contreparties de NKR ainsi activés par leurs ligands, correspond un signal, globalement négatif ou positif, d'activation des cellules NK et/ou T qui les exp riment. Les récepteurs NKR et leurs contreparties participent ainsi au contrôle, positif ou négatif, des réactions allogéniques d'un système immunitaire donné vis-à-vis de ce qu'il considère alors comme non-soi par exemple, des cellules cancéreuses ou infectées, ou bien encore des cellules de greffe ou transplantation allo- ou xénogénétique. Les récepteurs NKR et leurs contreparties participent en effet aux réactions entre hôte et greffon lors d'une greffe (ou transplantation) de cellules, tissu ou organe qui présente USA, vol. 94, p. 8088-8092 ; Albi et al. 1996, Sood, vol. 87, n09, p. 3993-4000). Or, les moyens pouvant actuellement être mis en oeuvre dans un contexte médical ne permettent pas de documenter l'ensemble des répertoires d'un patient, d'un organe, d'un tissu ou de cellules. C'est ainsi qu'actuellement, seule la compatibilité des molécules HLA-A, HLA-B et HLA-DR du donneur et du receveur est vérifiée préalablement à une greffe ou transplantation allo- ou xéno-génique. Ces critères de compatibilité n' apparaissent toutefois pas comme suffisants. Des traitements immunosuppresseurs (par exemple, à base de cyclosporine) doivent compléter ces procédures de greffe ou transplantation de manière à inhiber le système immunitaire du patient. De tels traitements sont à hauts risques pour le patient qui est alors susceptible de développer des infections opportunistes. Ces traitements immunosuppresseurs doivent de plus être maintenus à un certain niveau pendant plusieurs années, et le patient doit alors résister aux effets délétères des médicaments. Finalement, la réussite de telles procédures de greffe ou transplantation reste incertaine. En effet, des rejets de greffe de la part du receveur, ou bien encore, dans le cas de greffes comprenant des cellules immuno-compétentes, des réactions du greffon contre l'hôte (effet GVH, Graft Versus Host) sont malgré tout observés. De telles réactions de rejet ou de GVH conduisent généralement à de très sévères lésions; actuellement, elles ne peuvent toutefois être totalement écartées, et donc prévenues. Des effets bénéfiques inattendus de greffes allogéniques ont par ailleurs parfois été observés : des greffes allogéniques de moelle osseuse sur des patients leucémiques aplasiques ont parfois conduit à un effet thérapeutique anti-tumoral par lyse des cellules malignes du receveur et préservation de ses cellules saines. Cet effet thérapeutique sélectif, dans lequel sont impliquées les cellules NK et T, est désigné par GVL (Graft Versus Leukemia). Potentiellement, une greffe (ou une transplantation) de tissu hématopoïétique en général, et de moelle osseuse en particulier, peut conduire à un effet thérapeutique dans le cadre de malignités hématologiques telles qu'une leucémie, par lyse sélective de celles des cellules du receveur qui ne présentent plus les antigènes d'histocompatibilité présentés par les cellules saines. Les moyens actuellement disponibles pour le milieu médical ne permettent toutefois pas de prédire si l'organe ou le tissu considéré exercera un effet sélectif GVL pour le receveur considéré. en que connu, l'effet sélectif GVL ne peut donc actuellement être mis à profit dans le cadre d'une thérapie anti-cancéreuse. Les moyens actuellement développés dans le cadre de recherches expérimentales afin de documenter les différents répertoires de cellules humaines ou animales ne permettent par ailleurs pas de documenter précisément le répertoire en récepteurs NKR et en récepteurs contreparties de NKR l'identité précise de chaque récepteur NKR ou contrepartie de NKR ne peut être déterminée. Du fait de la forte homologie, en particulier au niveau extracytoplasmique, entre un récepteur NKR et un récepteur contrepartie de ce NKR (e.g. jusqu'à 96% d'homologie entre KIR et KAR), l'utilisation d'anticorps ne permet en effet souvent pas de discriminer entre des NKR qui sont inhibiteurs et leurs contreparties à fonctions activatrices, ou à tout le moins non inhibitrices. Les amorces oligonucléotidiques actuellement disponibles ne permettent quant à elles pas la mise en oeuvre d'une amplification en chaîne par polymérase capable de discriminer entre par exemple un NKR p58. 1 et un NKR p58. 2, ou entre un NKR p70. INH et un NKR p140. INM. Finalement, pour documenter précisément le répertoire en immunorécepteurs NKR et en leurs contreparties, il faut actuellement avoir recours après une étape de purification des récepteurs visés (e.g. par FACScan), à une étape de séquençage nucléotidique. La documentation du répertoire NKR /contreparties de NKR n'est donc actuellement pas réalisable en routine dans un contexte de type médical. Le niveau de stimulation et d'inhibition des programmes d'activation des cellules NK et T, et donc le potentiel de résistance d'un individu vis-à-vis du développement d'infections microbiennes ou parasitaires, de maladies auto-immunes, ou bien encore de cellules malignes, ne peut donc être mesuré. Il résulte également de cette absence de moyens adaptés pour la documentation des répertoi res NKR/contreparties de NKR que les effets sélectifs de type GVL ne peuvent être utilisés en thérapie, et que les réactions GVH ou de rejets lors de greffes ou de transplantations allo- ou xéno-géniques ne peuvent être complètement écartées. La présente invention propose donc des moyens permettant de documenter, pour un échantillon biologique donné, les répertoires en immunorécepteurs NKR et en immunorécepteurs contreparties activatrices ou à tout le moins non inhibitrices de récepteurs NKR Ces moyens permettent notamment de distinguer aisément entre un récepteur NKR et sa contrepartie activatrice ou non inhibitrice, ainsi que de distinguer entre différents récepteurs NKR, ou entre différentes contreparties de NKR Elle vise également les applications biologiques, et en particulier médicales et vétérinaires, de ces moyens. Les moyens selon l'invention présentent notamment 1' avantage d'être aisément utilisables dans un contexte médical ou vétérinaire, par exemple en hôpital ou clinique. La présente invention a pour objet une méthode in vitro de documentation d'un répertoire en immunorécepteur(s) NKR comprenant notamment les récepteurs KIR p58.l, p58.2, p70.INH, pl40.INH, et les récepteurs NKG2A et NKG2B et/ou d'un répertoire en immunorécepteur(s) contrepartie(s) de NKR, comprenant notamment les récepteurs KAR p50.l, p50.2, p70.ACT, pl40.ACT, et les récepteurs NKG2C, NKG2D, NKG2E, NKG2F, ces immunorécepteurs étant ci-après désigné(s) récepteur(s) cible(s), caractérisée en ce qu'elle comprend i. l'utilisation d'au moins une paire d'oligonucléotides, l'un étant désigné oligonucléotide 3' et l'autre oligonucléotide 5', les oligonucléotides 3' et 5' d'une même dite paire étant tous deux capables, dans des conditions d'hybridation correspondant à une incubation pendant 1 min dans un tampon [T ris -HCl 20mM pH8,4; KCl 50mM; MgCl2 2,5mM] à une température comprise entre 50"C et 650C environ, de s'hybrider à l'ADN ou à l'ADNc d'un récepteur cible NKR, ou contrepartie de NKR, mais ne s'hybridant pas, dans les mêmes conditions d'hybridation, avec l'ADN ou l'ADNc d'un récepteur contrepartie de NKR, ou respectivement d' un récepteur NKR, contrepartie fonctionnelle dudit récepteur cible, ii. la mise en contact de populations ADN ou ADNc d'un échantillon biologique d'origine humaine ou animale pour lequel on souhaite documenter le répertoire en immunorécepteur(s) cible(s), avec un excès d'au moins une paire d'oligonucléotides 3' et 5' selon i. dans des conditions favorables à l'hybridation de cette paire oligonucléotides 3' et 5' sur les ADN ou sur les ADNc de l'échantillon biologique, et iii. la détection des hybrides éventuellement formés entre ces ADN ou ADNc et la ou les paire(s) d'oligonucléotides 3' et 5'. Par contrepartie fonctionnelle d'un récepteur, nous entendons dans la présente demande un récepteur à structure homologue, en particulier au niveau extracytoplasmique, mais à fonction différente : par exemple, une contrepartie fonctionnelle du récepteur NKR p58.l est le récepteur contrepartie de NKR p50.l, et réciproquement; de même le récepteur NKR p58.2 et le récepteur contrepartie de NKR p50.2 sont l'un pour l'autre des contreparties fonctionnelles. La présente méthode permet donc notamment de distinguer un récepteur NKR (ou contrepartie de NKR) d'un récepteur contrepartie fonctionnelle de ce récepteur. La (ou les) paire(s) d'oligonucléotides 3' et 5' est (sont) en particulier capables de borner, sur l'ADN ou 1'ADNc d'un récepteur cible qui leur correspond, une séquence d'oligonucléotides (bornes incluses) qui est absente de la séquence ADN ou ADNc d'un récepteur avec lequel elle(s) est (sont) capable(s) de ne pas s'hybrider dans les conditions d'hybridation données sous i) cidessus. De manière avantageuse, ladite ou au moins une desdites paire(s) d'oligonucléotides 3' et 5' utilisée(s) est en outre capable, dans les mêmes conditions d'hybridation que celles définies sous i. , de ne pas s'hybrider à l'ADN ou ADNc d'un récepteur, indifféremment NKR ou contrepartie de NKR, autre que ledit récepteur cible. Selon une disposition particulière de cette manière avantageuse, ladite (ou au moins une desdites) paire(s) d'oligonucléotides 3' et 5' capable, dans les conditions d'hybridation définies sous i. ci-dessus, de s'hybrider à l'ADN ou l'ADNc d'un récepteur p58.l (ou p50.1), et de ne pas s'hybrider à l'ADN ou l'ADNc d'un récepteur p50. 1 (ou respectivement p58. 1) est en outre capable de ne pas s'hybrider dans les mêmes conditions d'hybridation à l'ADN ou l'ADNc d'un récepteur p58.2 ou p50. 2. Selon une deuxième disposition particulière de cette manière avantageuse, ladite, ou au moins une desdites, paire(s) d'oligonucléotides 3' et 5' capable, dans les conditions d'hybridation définies sous i. cidessus, de s'hybrider à l'ADN ou l'ADNc d'un récepteur p58.2 (ou p50.2), et de ne pas s'hybrider à l'ADN ou l'ADNc d'un récepteur p50.2 (ou respectivement p58.2) est en outre capable de ne pas s'hybrider dans les mêmes conditions d'hybridation à l'ADN ou l'ADNc d'un récepteur p58.l ou p50. 1. Selon une troisième disposition particulière de cette manière avantageuse, ladite (ou au moins une desdites) paire(s) d'oligonucléotides 3' et 5' capable, dans les conditions d'hybridation définies sous i. cidessus, de s'hybrider à l'ADN ou l'ADNc d'un récepteur p70.INH (ou p70.ACT), et de ne pas s'hybrider à l'ADN ou 1' ADNc d'un récepteur p70.ACT (ou respectivement p70. INH) est en outre capable de ne pas s'hybrider dans les mêmes conditions d'hybridation à l'ADN ou 1'ADNc d'un récepteur pl40. INH ou pl40.ACT. Selon une quatrième disposition particulière de cette manière avantageuse, ladite, ou au moins une desdites, paire(s) d'oligonucléotides 3' et 5' capable, dans les conditions d'hybridation définies sous i. cidessus, de s'hybrider à l'ADN ou 1' ADNc d'un récepteur pl40. INH (ou pl40.ACT), et de ne pas s'hybrider à l'ADN ou 1'ADNc d'un récepteur pl40.ACT (ou respectivement pl40.INH) est en outre capable de ne pas s'hybrider dans les mêmes conditions d'hybridation à l'ADN ou 1' ADNc d'un récepteur p70. INH ou p70.ACT. Selon un mode de réalisation avantageux de l'invention, l'oligonucléotide 5' d'une dite paire d'oligonucléotides 3' et 5' utilisée pour un récepteur cible NKR (ou contrepartie de NKR) est capable, dans les conditions d'hybridation définies sous i. ci-dessus, de s'hybrider à l'ADN ou à l'ADNc d'un récepteur contrepartie de NKR (ou respectivement NKR), contrepartie fonctionnelle dudit récepteur cible NKR (ou respectivement contrepartie de NKR). Selon une disposition avantageuse de ce mode de réalisation, la séquence de l'oligonucléotide 5' d'une dite paire d'oligonucléotides 3' et 5' utilisée pour un récepteur cible NKR (ou contrepartie de NKR) comprend la séquence de l'oligonucléotide 5' d'une autre dite paire d'oligonucléotides 3' et 5' ayant pour récepteur cible un récepteur contrepartie de NKR (ou respectivement NKR), contrepartie fonctionnelle dudit récepteur cible NKR (ou respectivement contrepartie de NKR). Selon un autre mode de réalisation avantageux de l'invention, l'oligonucléotide 3' d'une dite paire d'oligonucléotides 3' et 5' , utilisée pour un récepteur cible KAR, est capable, dans les mêmes dites conditions d'hybridation, de s'hybrider à l'ADN ou ADNc dudit récepteur cible KAR au niveau d'un enchaînement nucléotidique qui comprend une séquence correspondant, selon le code génétique universel, et en tenant compte de la dégénérescence dudit code, à la séquence d'acides aminés Lys Ile Pro Phe Thr Ile (K I P F T I) ou Lys Leu Pro Phe Thr Ile (K L P F T I) (SEQ ID n026 ou 27). Selon un mode de réalisation particulièrement avantageux de l'invention, ladite (ou au moins une desdites) paire(s) d'oligonucléotides 3' et 5' ayant pour récepteur cible un récepteur KIR est choisie parmi le groupe de paires d'oligonucléotides 3' et 5' constitué par - un oligonucléotide 5' comprenant la séquence SEQ ID n01, ou une séquence en dérivant, et au moins un oligonucléotide 3' comprenant la séquence SEQ ID n05, n02, n06 ou n07, ou une séquence en dérivant, - un oligonucléotide 5' comprenant la séquence SEQ ID n04, ou une séquence en dérivant, et au moins un oligonucléotide 3' comprenant la séquence SEQ ID n05, n02, n06 ou n07, ou une séquence en dérivant, - un oligonucléotide 5' comprenant la séquence SEQ ID n09, ou une séquence en dérivant, et au moins un oligonucléotide 3' comprenant la séquence SEQ ID n05, n02, n06 ou n07, ou une séquence en dérivant, - au moins un oligonucléotide 5' comprenant la séquence SEQ ID ne10, ne11, ne12, ou ne13, ou une séquence en dérivant, et un oligonucléotide 3' comprenant la séquence SEQ ID n014, ou une séquence en dérivant. Par séquence dérivant d'une première séquence, nous entendons dans la présente demande une séquence dérivée de la première notamment par inversion, délétion, addition, ou substitution de nucléotide(s), et présentant les propriétés d'hybridation que l'acide nucléique correspondant à la première séquence présente dans les conditions i. ci-avant définies. Selon une disposition de ce mode de réalisation particulièrement avantageux, ladite paire d'oligonucléotides 3' et 5' ayant pour récepteur cible un récepteur p58.l correspond à un oligonucléotide 5' comprenant la SEQ ID n01, ou une séquence en dérivant, et un équimélange de quatre oligonucléotides 3', chacun d'eux comprenant la SEQ ID n05, n02, n06 ou n07, ou une séquence en dérivant. Selon une autre disposition de ce mode de réalisation particulièrement avantageux, ladite paire d'oligonucléotides 3' et 5' ayant pour récepteur cible un récepteur p58.2 correspond à un oligonucléotide 5' comprenant la SEQ ID n04, ou une séquence en dérivant, et un équimélange de quatre oligonucléotides 3', chacun d'eux comprenant la SEQ ID n05, n02, n 6 ou nQ7, ou une séquence en dérivant. Selon encore une autre disposition de ce mode de réalisation particulièrement avantageux, ladite paire d'oligonucléotides 3' et 5' ayant pour récepteur cible un récepteur p70.INH correspond à un oligonucléotide 5' comprenant la SEQ ID n"9, ou une séquence en dérivant, et un équimélange de quatre oligonucléotides 3', chacun d'eux comprenant la SEQ ID n05, n"2, n06 ou n"7, ou une séquence en dérivant. Selon encore une autre disposition de ce mode de réalisation particulièrement avantageux, ladite paire d'oligonucléotides 3' et 5' ayant pour récepteur cible un récepteur pl40.INH correspond à un équimélange de quatre oligonucléotides 5' , chacun d' eux comprenant la SEQ ID ne10, ne11, n"12 ou ne13, ou une séquence en dérivant, et un oligonucléotide 3' comprenant la SEQ ID ne14, ou une séquence en dérivant. Selon un autre mode de réalisation particulièrement avantageux de l'invention, ladite (ou au moins une desdites) paire(s) d'oligonucléotides 3' et 5' ayant pour récepteur cible un récepteur KAR est choisie parmi le groupe de paires d'oligonucléotides 3' et 5' constitué par - un oligonucléotide 5' comprenant la séquence SEQ ID n01, ou une séquence en dérivant, et un oligonucléotide 3' comprenant la séquence SEQ ID n"3, ou une séquence en dérivant, - un oligonucléotide 5' comprenant la séquence SEQ ID n"8, ou une séquence en dérivant, et un oligonucléotide 3' comprenant la séquence SEQ ID n03, ou une séquence en dérivant, - un oligonucléotide 5' comprenant la séquence SEQ ID n"9, ou une séquence en dérivant, et un oligonucléotide 3' comprenant la séquence SEQ ID n03, ou une séquence en dérivant, - un oligonucléotide 5' comprenant la séquence SEQ ID ne15, ou une séquence en dérivant, et un oligonucléotide 3' comprenant la séquence SEQ ID n03, ou une séquence en dérivant. Selon une disposition de cet autre mode de réalisation particulièrement avantageux, ladite paire d'oligonucléotides 3' et 5' ayant pour récepteur cible un récepteur p50. 1 correspond à un oligonucléotide 5' comprenant la SEQ ID n01, ou une séquence en dérivant, et un oligonucléotide 3' comprenant la SEQ ID n"3, ou une séquence en dérivant. Selon une autre disposition de cet autre mode de réalisation particulièrement avantageux, ladite paire d'oligonucléotides 3' et 5' ayant pour récepteur cible un récepteur p50.2 correspond à un oligonucléotide 5' comprenant la SEQ ID n08, ou une séquence en dérivant, et un oligonucléotide 3' comprenant la SEQ ID n03, ou une séquence en dérivant. Selon encore une autre disposition de cet autre mode de réalisation particulièrement avantageux, ladite paire d'oligonucléotides 3' et 5' ayant pour récepteur cible un récepteur p70.ACT correspond à un oligonucléotide 5' comprenant la SEQ ID n09, ou une séquence en dérivant, et un oligonucléotide 3' comprenant la SEQ ID n03, ou une séquence en dérivant. Selon encore une autre disposition de cet autre mode de réalisation particulièrement avantageux, ladite paire d'oligonucléotides 3' et 5' ayant pour récepteur cible un récepteur p140.ACT correspond à un oligonucléotide 5' comprenant la SEQ ID ne15, ou une séquence en dérivant, et un oligonucléotide 3' comprenant la SEQ ID n03, ou une séquence en dérivant. Selon encore un autre mode de réalisation particulièrement avantageux de l'invention, ladite (ou au moins une desdites) paire(s) d'oligonucléotides 3' et 5' ayant pour récepteur cible un récepteur NKG2 est choisie parmi le groupe de paires d'oligonucléotides 3' et 5' constitué par - un oligonucléotide 5' comprenant la séquence SEQ ID n016, ou une séquence en dérivant, et un oligonucléotide 3' comprenant la séquence SEQ ID ne17, ou une séquence en dérivant, - un oligonucléotide 5' comprenant la séquence SEQ ID ne18, ou une séquence en dérivant, et un oligonucléotide 3' comprenant la séquence SEQ ID ne17, ou une séquence en dérivant, - un oligonucléotide 5' comprenant la séquence SEQ ID ne19, ou une séquence en dérivant, et un oligonucléotide 3' comprenant la séquence SEQ ID ne17, ou une séquence en dérivant, - un oligonucléotide 5' comprenant la séquence SEQ ID ne20, ou une séquence en dérivant, et un oligonucléotide 3' comprenant la séquence SEQ ID n021, ou une séquence en dérivant. Selon une première disposition de cet encore autre mode de réalisation particulièrement avantageux, ladite paire d'oligonucléotides 3' et 5' ayant pour récepteur cible un récepteur NKG2A (inhibiteur) correspond à un oligonucléotide 5' comprenant la SEQ ID ne16, ou une séquence en dérivant, et un oligonucléotide 3' comprenant la SEQ ID ne17, ou une séquence en dérivant. Selon une deuxième disposition de cet encore autre mode de réalisation particulièrement avantageux, ladite paire d'oligonucléotides 3' et 5' ayant pour récepteur cible un récepteur NKG2B (inhibiteur) correspond à un oligonucléotide 5' comprenant la SEQ ID ne18, ou une séquence en dérivant, et un oligonucléotide 3' comprenant la SEQ ID ne17, ou une séquence en dérivant. Selon une troisième disposition de cet encore autre mode de réalisation particulièrement avantageux, ladite paire d'oligonucléotides 3' et 5' ayant pour récepteur cible un récepteur NKG2C (activateur) correspond à un oligonucléotide 5' comprenant la SEQ ID ne19, ou une séquence en dérivant, et un oligonucléotide 3' comprenant la SEQ ID ne17, ou une séquence en dérivant. Selon une quatrième disposition de cet encore autre mode de réalisation particulièrement avantageux, ladite paire d'oligonucléotides 3' et 5' ayant pour récepteur cible un récepteur NKG2D (activateur) correspond à un oligonucléotide 5' comprenant la SEQ ID n020, ou une séquence en dérivant, et un oligonucléotide 3' comprenant la SEQ ID n021, ou une séquence en dérivant. Lesdites conditions favorables à l'hybridation de la ou des paires d'oligonucléotides 3' et 5' mises en contact avec 1'ADN ou l'ADNc de l'échantillon biologique correspondent avantageusement à une incubation pendant 1 min dans un tampon [Tris-HC1 20mM pH8,4; KCl 50mM; MgCl2 2,5mM] à une température comprise entre 50 C et 650C environ. De telles conditions sont en particulier prés entées dans les exemples. De manière avantageuse, les deux oligonucléotides 3' ou 5' d'une même dite paire sont chacun couplés à un marqueur, notamment couplée à un marqueur fluorescent ou radioactif, tel que du 32p, permettant la révélation des hybrides qu'ils forment éventuellement avec lesdites populations ADN ou ADNc dudit échantillon biologique. De manière également avantageuse, ladite (ou lesdites) paire(s) d'oligonucléotide(s) 3' et 5' sert (servent) d'amorces respectivement 3' et 5' pour une extension par ADN polymérase, telle qu'une Taq polymérase. Des conditions favorables à une telle extension comprennent, outre l'ajout d'ADN polymérase, l'ajout des 4 dNTP (désoxyribonucléosidetriphosphate) en présence d'un tampon de type Tris-HCl. Lesdits hybrides éventuellement formés sont alors, préalablement à leur détection, amplifiés par au moins une PCR (amplification en chaîne par polymérase; cf. les brevets EP 201 184 et EP 200 362) ou RT-PCR dans le cas d'ADNc rétrotranscrit à partir d'ARNm. Le cas échéant, lesdits hybrides éventuellement formés sont amplifiés par "Nested PCR" (double PCR emboîtée). Des exemples de conditions favorables à 1' amplification par PCR sont donnés dans les exemples. Selon un autre mode de réalisation avantageux de l'invention, ladite détection des hybrides éventuellement formés comprend en outre la résolution sur gel de polyacrylamide du mélange réactionnel issu de la mise en contact, ainsi que la révélation de la présence ou de l'absence de bandes électrophorétiques contenant lesdits hybrides éventuellement formés. Selon un autre mode de réalisation de l'invention, le répertoire en immunorécepteurs documenté est quantifié par référence aux quantités de ss-actine mesurées sur le même échantillon biologique, ou par référence aux quantités d'une molécule spécifique d'un type cellulaire présentes dans ledit échantillon biologique, tel que notamment les molécules CD56 pour les cellules NK. La méthode selon l'invention peut être appliquée à la documentation d'un répertoire génotypique en immunorécepteurs NKR et/ou en immunorécepteurs contreparties de NKR : l'étape ii. de mise en contact définie ci-dessus est alors réalisée avec les populations ADN génomique de l'échantillon biologique. La méthode selon l'invention peut également être appliquée à la documentation d'un répertoire d'expression en immunorécepteurs NKR et/ou en immunorécepteurs contreparties de NKR : l'étape ii. de mise en contact définie ci-dessus est alors réalisée avec les populations ADNc, rétro-transcrites des populations ARNm de 1' échantillon biologique. Des échantillons biologiques d'origine humaine ou animale particulièrement appropriés à la mise en oeuvre de la méthode selon l'invention comprennent du sang périphérique, de la moelle osseuse, des lymphocytes, des cellules NK et/ou T, des cellules transgéniques exprimant des immunorécepteurs, une fraction isolée à partir de ces échantillons. La méthode selon l'invention peut être notamment appliquée au criblage d'une banque d'organes, de tissus ou de cellules. Elle permet ainsi une meilleure prévision - de l'acceptation ou de rejet, par un homme ou un animal, de cellules, d'un tissu ou d'un organe génétiquement différent(es), - de l'inocuité ou de la pathogénicité (effet GVH), pour un homme ou un animal, d'une greffe ou transplantation, en particulier de cellules, tissu, ou organe génétiquement différent(es), - d'un effet potentiel de type GVL que des cellules, un tissu ou un organe génétiquement différent(es) pourraient exercer sur un homme ou animal. La méthode selon l'invention permet également le suivi de l'éventuelle apparition de telles réactions après greffe ou transplantation allo- ou xénogénique. La méthode selon l'invention peut également être appliquée à la détermination de l'état d'activation de cellules NK et/ou T à un instant donné chez un animal ou un homme. Elle permet alors la prévision ou le suivi de l'état de résistance d'un animal ou d'un homme vis-à-vis d'une infection virale, telle qu'une infection par un VIH, d'une infection parasitaire, telle que la malaria, d'une infection bactérienne, vis-à-vis d'une maladie auto-immune, telle que la polyarthrite rhumatoïde, ou bien encore vis-à vis du développement de cellules malignes telles que des cellules leucémiques. L'utilisation prévisionnelle de la méthode selon l'invention est d'un intérêt particulier dans le cadre d'épidémies. La méthode selon l'invention peut également être avantageusement appliquée au criblage de médicaments actifs vis-à-vis de maladies infectieuses, de maladies autoimmunes, ou de maladies tumorales. La présente invention a également pour objet un kit pour la mise en oeuvre de ladite méthode comprenant dans un récipient, au moins une dite paire d'oligonucléotides, les réactifs pour la réalisation de ladite ou lesdites méthode(s) tels que tampon, marqueur (éventuellement couplé aux oligonucléotides de la dite paire), ainsi qu'un mode d'emploi. D'autres caractéristiques et avantages de la présente invention apparaîtront encore à travers les exemples de réalisation suivants, donnés à titre indicatif et non limitatifs. Lesdits exemples font référence aux Figures 1 et 2 La Figure 1 représente les produits issus d'une amplification par PCR (amplification en chaîne par polymérase après PT transcription enzymatique inverse à l'aide de paires d'oligonucléotides selon l'invention servant d'amorces), des séquences codantes pour p50.2 (Fig. 1A) et p58.2 (Fig.lB) dans des cellules NK humaines; La Figure 2 représente les produits issus d'une amplification par PCR de la séquence codante pour p50.2 à partir du DNA génomique de souris transgéniques p50.2t. Exemple 1 : Documentation du répertoire NKF/contreparties de NKR exprimé par une population de cellules NK humaines (PT-PCR). 1. Préparation des AW Des préparations ARN ont été réalisées à partir de cellules NK humaines clonées et phénotypées p50.2+ et/ou p58.2+. La technique immunologique ne permet pas de documenter précisément un tel répertoire : l'anticorps GL183 (Immunotech) reconnaît à la fois le récepteur NKR inhibiteur p58.2 et sa contrepartie activatrice p50.2. Des cellules NK humaines clonées et phénotypées p50.2- et p58.2à l'aide de l'anticorps GL183 servent de témoins négatifs. Les préparations AEN sont réalisées comme suit. Extraction 100 ul de Trizol (Gibco BRL catégorie n015596-026) ont été ajoutés à 106 cellules. On mélange en pipetant plusieurs fois, sans utiliser de mélangeur à vortex. On laisse la solution 5 minutes à température ambiante puis on ajoute 20 ul de chloroforme sans alcool isoamylique. On mélange à nouveau sans utiliser de mélangeur à vortex et on laisse la solution se reposer 5 minutes à température ambiante. On centrifuge alors à 4 C pendant 15 minutes de manière à bien séparer la phase organique inférieure, qui contient 1'ADN, de la phase aqueuse supérieure qui contient l'ARN. On récupère la phase aqueuse sans perturber l'interface entre phase aqueuse et phase organique. Précipitation 50 ul d'isopropanol sont ajoutés à la phase aqueuse et on laisse L'AFIN précipiter pendant 15 minutes à température ambiante. On centrifuge alors pendant 10 minutes à 4"C. Le surnageant est éliminé, et le culot est lavé avec 100 ul d'éthanol à 70%. Après centrifugation pendant 5 minutes à 4 C (7500 g), on laisse sécher à l'air libre (sans sécher sous vide). Le culot D'ART est remis en suspension dans 20 Al d'H20. 2. Préparation des paires d'oligonucléotides Le tableau 1 ci-dessous présente les paires d'oligonucléotides utilisées. Sont ici rapportés les résultats relatifs à l'utilisation des paires d'oligonucléotides C (SEQ ID n04 en tant qu'oligonucléotide 5' et un équimélange de SEQ ID n05, n"2, n"6 et n"7 en tant qu'oligonucléotide 3') et D (SEQ ID n 8 en tant qu' oligonucléotide 5' et SEQ ID n03 en tant qu'oligonucléotide 3' ) présentées dans le tableau 1. Les séquences ADNc, sur la base desquelles ces paires d'oligonucléotides ont été mises au point, sont présentées dans le tableau 2 ci-dessous (nom des clones ADNc et numéro d'accès sur Genbank). Pour chaque paire d'oligonucléotides, ont ainsi été pris en compte les variants alléliques et les variants d'excision-épissage (épissage alternatif) connus d' un même récepteur. Chaque paire d'oligonucléotides est construite, après alignement des séquences ADNc connues des différents variants d'un même récepteur cible (e. g. le KIR p58.2), de manière à ce que cette paire puisse déterminer, sur l'ensemble de ces variants, les bornes d'un fragment consensus, sans pour autant pouvoir faire de même sur un quelconque variant du récepteur contrepartie du récepteur cible (e.g. le KAR p50.2). La séquence de chaque oligonucléotide d'une même paire est ensuite optimisée de manière à ce que la température d' annelage (annealing en anglais) de chacune d'elles soit proche (e.g. AT Chaque oligonucléotide présente en effet une température d'annelage (ou d'hybridation) qui lui est propre. Cette température d' annelage est fonction du rapport R - -- + O x100 et de la longueur de nombre total de bases (A T+G +C) l'oligonucléotide considéré selon la formule : Température d'annelage (ou d'hybridation) d'un oligonucléotide = 650 Tm = 69,3 + 0,41 (R) - (en C) longueur en pb Or, dans une réaction de type amplification en chaîne par polymérase les oligonucléotides d'une même paire doivent pouvoir tous deux s' anneler au récepteur cible dans des conditions de réaction communes, ceci afin de servir d'amorces à l'amplification du fragment consensus. Si les oligonucléotides d'une même paire présentent des températures propres d'annelage proches (e.g. 54 C et 56 C), ils pourront s'hybrider au récepteur cible, sans pour autant s'hybrider au récepteur contrepartie correspondant, à une température de 540C ou 550C. Si les oligonucléotides d'une même paire présentent par contre des températures propres d' annelage très distantes (e.g. 490C et 560C), la réaction d'hybridation au récepteur cible est préférentiellement conduite à la plus basse des deux températures (e. g. 490C ou 500C), ce qui permet de maintenir la reconnaissance de sa cible nucléotidique par l'oligonucléotide dont la température propre d'annelage est la plus basse. Dans cette situation, une diminution de spécificité peut toutefois intervenir il peut être observé que certaines paires d'oligonucléotides parviennent, dans de telles conditions de température, à s'hybrider au récepteur-contrepartie du récepteur cible. Une manière de remédier à cette perte de spécificité consiste à augmenter la longueur de l'oligonucléotide dont la température propre d'annelage est la plus basse, sans faire perdre à la paire d'oligonucléotides considérée sa spécificité. 3. Amplification en chaîne par polymérase après transcription enzymatique inverse (PT-PCR). 5 ug d'ARN totaux sont transcrits en ADNc par incubation avec une transcriptase inverse (PT) à l'aide du kit First Strand DNA-Ready to go (Pharmacia). 10 ul d'ADNc sur les 33 ul obtenus sont mis en contact avec les paires d'oligonucléotides C et D qui servent alors d'amorces (cf. tableau 1): 10 ul de produit issu de RT; Tampon PCR 10X 10 l; MgCl2 50mM; dXTP 10 mM; Oligonucléotides 3' à 10 uM: 5 l; Oligonucléotide 5' 10 M : 5 l; Taq polymérase 0,5 ul; H2O : qsp 100 ul. L'amplification par PCR (DNA engine PTC 200, MJ Research, Massachussets) est réalisée en suivant les étapes suivantes - étape n 1 (dénaturation initiale) : 5 min à 94 C, - étape n02 : 35 cycles comprenant a) dénaturation 1 min à 940C b) annelage 1 min à 550C pour la paire C et 50 0C pour la paire D d'oligonucléotides, c) extension 1 min à 72"C, - étape n 3: (extension finale) 1 min à 720 C. La durée de l'extension 2c peut être augmentée si le fragment à amplifier a une grande taille (e.g. supérieure à 1000-1400pb environ). La température de l'étape d'annelage 2b dépend de la paire d'oligonucléotides utilisés comme amorces (cf. point 2. ciavant). Elle correspond à une température consensus entre les températures propres d' annelage de chacun des deux oligonucléotides faisant paire (température moyenne ou température la plus basse des deux). Cette température est généralement comprise entre 450C et 700 C, préférentiellement entre 500C et 650C. 10 ul des produits issus de l'amplification par RT-PCR sont résolus par electrophorèse sur gel d'agarose à 2 a en parallèle avec des marqueurs de poids moléculaires (M). Les résultats sont illustrés sur les figures 1A et 1 1B La figure 1 illustre l'amplification par PCR après PT (transcription enzymatique inverse) des séquences codantes pour p58.2 et p50.2 de cellules NK humaines. En figure 1A est illustrée le résultat de la résolution électrophorétique des produits issus de l'amplification par RT-PCR après mise en contact de la paire d'amorces D selon l'invention (cf. tableau 1) avec les populations ADNc de cellules NK humaines phénotypées p50.2+ et p58.2+ (piste +) à l' aide de l' anticorps GL183, ou avec les populations ADNc de cellules NK humaines phénotypées p50.2- et p58.2- (piste -) à l' aide de ce même anticorps GL183. En piste M, sont résolus des marqueurs de poids moléculaire. En figure 1 B, est illustrée le résultat de la résolution électrophorétique des produits issus de l'amplification par RT-PCR après mise en contact de la paire d' amorces C selon l'invention (cf. tableau 1) avec les populations ADNc de cellules NK humaines phénotypées p50.2+ et p58.2+ (piste +) à l' aide de l' anticorps GL183, ou avec les populations ADNc de cellules NK humaines phénotypées p50.2- et p58.2- (piste -) à l'aide de ce même anticorps GL183. En piste M, sont résolus des marqueurs de poids moléculaire. Il peut observé que les paires d'oligonucléotides C et D selon l'invention permettent de reconnaître respectivement un phénotype, respectivement, p58.2+ et p50.2+, en reconnaissant un fragment de, respectivement, 653 pb et 533pb. La méthode selon l'invention permet donc de discriminer entre un phénotype p58.2+ (récepteur KIR, à fonction inhibitrice) et un phénotype p50.2+ (récepteur KAR contrepartie de 58.2, à fonction activatrice), ce qui n' était jusqu' à présent pas réalisable sous séquençage. Exemple 2 : Documentation du répertoire génétique (potentiel) NKR/contreparties de NKR d'une population de splénocytes de souris transgéniques p50.2+ (PCR). 1 - Préparation des ADN Des préparations ADN ont été réalisées à partir de splénocytes de souris transgéniques p50.2+. La technique immunologique ne permet pas de déterminer si de tels splénocytes sont p50.2+ (récepteur KAR, activateur) ou p58.2+ (récepteur KIR, inhibiteur, ou bien encore p50.2+ et p58.2+). Des splénocytes de souris non transgéniques (p50.2-) servent de témoins négatifs. Extraction Cette étape est réalisée comme décrit en exemple 1. Les ADN étant contenus dans la phase organique inférieure, c' est ici cette phase qui est récupérée après avoir éliminé la phase aqueuse et un peu d'interface. Précipitation On ajoute 30 ul ul méthanol à 100% et on laisse reposer 5 minutes à température ambiante. Après centrifugation pendant 5 minutes à 40C (2 000g), on jette le surnageant et on lave le culot avec 100 ul de citrate de sodium 0,1M dans de l'méthanol à 10%. On laisse 30 minutes à température ambiante en mélangeant de temps en temps. On centrifuge pendant 5 minutes à 40C (2 000g). On répète ce lavage une seconde fois. Le culot d'ADN obtenu est remis en suspension dans 200 ul d'méthanol à 70%. On laisse 15 minutes à température ambiante en mélangeant de temps en temps et on centrifuge pendant 5 minutes à 40C (2 000g). Le culot est mis à sécher brièvement sous vide (1 à 2 ug d'ADN environ sont obtenus) et est remis en suspension dans 10 pl de NaOH 8mM. En cas de présence de matériel insoluble, on microcentrifuge 10 minutes à température ambiante. On transfère le surnageant dans un nouveau tube. Le pH est neutralisé en ajoutant 1,25 ul d'Hepes 0,1 M pour 10 ul. 2 - Préparation des paires d'oligonucléotides Les paires d'oligonucléotides sont préparées comme décrit en exemple 1. Sont ici rapportés les résultats relatifs à la paire D d' oligonucléotides (SEQ ID n"8 en tant qu' oligonucléotide 5' et SEQ ID n"3 en tant qu' oligonucléotide 3') selon l'invention (cf. tableau 1 cidessous). 3 - Amplification en chaîne par polymérase (PCR) L'amplification en chaîne par polymérase est réalisée comme décrit en exemple 1 en mettant en contact les préparations d' ADN génomiques obtenues avec des paires d'oligonucléotides D servant alors d'amorces. Les produits issus de l'amplification sont résolus sur gel d'agarose à 2% en parallèle avec des marqueurs de poids moléculaires (M). Les résultats de résolution électrophorétique sur gel d'agarose à 2% des produits issus de la PCR sont illustrés par la figure 2. La figure 2 illustre 1' amplification par PCR de la séquence codante pour p50.2 à partir du DNA génomique de splénocytes de souris transgéniques p50.2+ : y est illustrée le résultat de la résolution électrophorétique des produits issus de l'amplification par PCR après mise en contact de la paire d'amorces D selon l'invention (cf. tableau 1) avec les populations ADN de splénocytes de souris transgéniques p50.2+ (pistes +) ou de souris non transgéniques p50.2 (pistes -). En piste M, sont résolus des marqueurs de poids moléculaires. Les amorces D selon l'invention permettent de reconnaitre un fragment de 533 pb présent sur l'ADN de splénocytes murins p50.2+ et absent sur l'ADN de splénocytes murins p50.2-. Des résultats comparables ont été obtenus avec les paires d' oligonucléotides A, B et E à L présentées dans le tableau 1 ci-après et ont également permis de documenter les récepteurs visés (cf. colonne "molécule" du tableau 1). Tableau 1 Paire Molécule Fonction Tm Nom de l'oligo Séquence de l'oligo Oligo 5' d'oligo (5'-- > 3') Séquence Oligo 3' Inhibiteur 56 C A p58.E B6 p58. 1FOR AGTCGCATGACGCAAGAC Seq ID N 1 54 C (p58.1) ITIM N-term BACK CAACTGTG (T/C) (A/G)TATGTCAC Seq ID N 5,2,6,7 Activateur 56 C B p50.E B6 p58.1 FOR AGTCGCATGACGCAAGAC Seq ID N 1 49 C (p50.1) TM-ACT BACK GATGGTGAAAGGGATTTT Seq ID N 3 C p58.183 Inhibiteur 56 C p58.2 FOR GGTCCCATGATGCAAGAC Seq ID N 4 (p58.2) 54 C ITIM N-term BACK CAACTGTG (T/C) (A/G) TATGTCAC Seq ID N 5,2,6,7. D p50.183 Activateur 56 C p58.2 FOR GGTCCCATGATGCAAGAC Seq ID N 8 (p50.2) 49 C TM-ACT BACK GATGGTGAAAGGGATTTT Seq ID N 3 E p70.INH Inhibiteur 58 C p70.FRO CCCGTGGTGATCATGGTC Seq ID N 9 54 C ITIM N-term BACK CAACTGTG (T/C) (A/G)TATGTCAC Seq ID N 5,2,6,7. F p70.ACT Activateur 58 C p70.FOR CCCGTGGTGATCATGGTC Seq ID N 9 49 C TM-ACT BACK GATGGTGAAAGGGATTTT Seq ID N 3 G p140.INH Inhibiteur 56 C ITIM N-term.FOR GTGAG (A/G) TAG (A/G) CACAGTTG Seq ID N 10,11,12,13 58 C Ext C-term BACK ACCTGACTGTGGTGCTCG Seq ID N 14 Tableau 1 (suite) H p140.ACT Activateur 58 C p140.FOR ACCTACAGATGTTATGGTTCTGTT Seq ID N 15 49 C TM-ACT BACK GATGGTGAAAGGATTTT Seq ID N 13 Inhibiteur 54 C I NKG2A NKG2A FOR TCTACATTAATACAGAGGCAC Seq ID N 16 54 C NKG2A/ B/C. BACK ATCTATAGAAAGCAGACT Seq ID N 17 Inhibiteur 52 C J NKG2 B NKG2 B FOR ATTCCCTCACGTCATTGT Seq ID N 18 54 C NKG2a/ B/C. BACK ATCTATAGAAAGCAGACT Seq ID N 17 K NKG2C Activateur 54 C NKG2C. FOR AGTAAACAAAGAGGAACCTTC Seq ID N 19 54 C NKG2A/ B/C. BACK ATCTATAGAAAGCAGACT Seq ID N 17 L NKG2D Activateur 56 C NKG2D. FOR AGCAAAGAGGACCAGGATTTA Seq ID N 20 58 C NKG2D. BACK CACAGTCCTTTGCATGCAGAT Seq ID N 21 M CD56 51 C 5' hCD56 ATCCAGTACACTGATGAC Seq ID N 22 54 C 3' hCD56 GTCGATGGATGGTGAAGA Seq ID N 23 N Actine 62 C 5' Actine TACCACTGGCATCGTGATGGACT Seq ID N 24 64 C 3' Actine TCCTTCTGCATCCTGTCGGCAAT Seq ID N 25 TABLEAU 2 Paire Numéro d'oligonucléotides | nom du CDNA | d'accès sur Genbank A cl-42 U24076 NKAT-I L41267 cl-47. 11 U24078 B X98858 X98585 X98892 X98892 NKAT-7AA L76670 NKAT-9AA L76672 C cl-43 U24075 NKAT-6AA L76669 NKAT-2 BA L76663 cl-6 U24074 NKAT-2 L41268 KIR-023GB U73395 NKAT-2AB L76662 NKAT-3DA L76664 D |cl-49 |U24079 NKAT-5 L41347 X89893 X89893 cl-39 U24077 NKAT-8 L76671 NKAT-5DA L76667 E X94262 X94262 NKAT-3 L41269 NK BI-1 U31416 NK BI-2 U33328 KIR-103AS U71199 KIR-103AST U73394 cl-1.1 X94373 cl-ll U30274 cl-2 |U30273 Tableau 2 (suite) F NKAT-10 L76661 KIR-123FM U73396 G NKAT-4 L41270 X94374 X94374 X93595 X93595 X93596 X93596 NKAT-4 BA L76666 NKAT-4AA L76665 cl-5 U30272 I NKG2A X54867 J NKG2B X54868 K NKG2C X54869 L NKG2D X54870 LISTE DE SEQUENCES (1) INFORMATIONS GENERALES (i) DEPOSANT: (A) NOM: IN. SE. RM. (B) RUE 101 rue de Tolbiac (C) VILLE: PARIS (E) PAYS: FIANCE (F) CODE POSTAL: 75654 (ii) TITRE DE L'INVENTION Méthode de documentation en immunorécepteurs NKR et en immunorécepteurs contreparties de NKR (iii) NOMBRE DE SEQUENCES: 27 (iv) FORME DECHIFFRABLE PAR ORDINATEUR (A) TYPE DE SUPPORT: Floppy disk (B) ORDINATEUR: IBM PC compatible (C) SYSTEME D' EXPLOITATION: PC-DOS/MS-DOS (D) LOGICIEL: PatentIn Release &num;1.0, Version &num;1.30 (OEB) (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 1: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR 18 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: Autre acide nucléique (vi) ORIGINE: (C) INDIVIDU/ISOLE: p58.i FOR (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 1: AGTCGCATGA CGCAAGAC 18 (3) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 2: (i) CAPACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR 18 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGUPATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: Autre acide nucléique (vi) ORIGINE: (C) INDIVIDU/ISOLE: ITIM N-term BACK (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 2: CAACTGTGTG TATGTCAC 18 (4) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 3: (i) CARACTERSTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR 18 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS simple (D) CONFIGUPATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: Autre acide nucléique (vi) ORIGINE: (C) INDIVIDU/ISOLE: TM-ACT WCK (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 3: GATGGTGAAA GGGATTTT 18 (5) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 4: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR 18 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: Autre acide nucléique (vi) ORIGINE: (C) INDIVIDU/ISOLE: P58.2.FOR (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 4: GGTCCCATGA TGCAAGAC 18 (6) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 5: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR 18 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS simple (D) CONFIGUPATION linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: Autre acide nucléique (vi) ORIGINE: (C) INDIVIDU/ISOLE: ITIM N-term BACK (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 5: CAACTGTGTA TATGTCAC 18 (7) INFOPMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 6: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR 18 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS simple (D) CONFIGUPATION linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: Autre acide nucléique (vi) ORIGINE: (C) INDIVIDU/ISOLE: ITIM N-term 3XCK (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 6: CAACTGTGCA TATGTCAC 18 (8) INFOPMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 7: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR 18 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGUPATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: Autre acide nucléique (vi) ORIGINE: (C) INDIVIDU/ISOLE: ITIM N-term BACK (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 7: CAACTGTGCG TATGTCAC 18 (9) INFOPMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 8: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR 18 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: Autre acide nucléique (vi) ORIGINE: (C) INDIVIDU/ISOLE: p58.2 FOR (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 8: GGTCCCATGA TGCAAGAC 18 ( (i) CAPACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR 18 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: Autre acide nucléique (vi) ORIGINE: (C) INDIVIDU/ISOLE: p70.FOR (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 9: CCCGTGGTGA TCATGGTC 18 (11) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 10: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR 18 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: Autre acide nucléique (vi) ORIGINE: (C) INDIVIDU/ISOLE: ITIM N-term.FOR (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 10: GTGACATACA CACAGTTG 18 (12) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 11: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR 18 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGUPATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: Autre acide nucléique (vi) ORIGINE: (C) INDIVIDU/ISOLE: ITIM N-term.FOR (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 11: GTGACATACG CACAGTTG 18 (13) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 12: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR 18 paires de bases (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: Autre acide nucléique (vi) ORIGINE: (C) INDIVIDU/ISOLE: ITIM N-term.FOR (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 12: GTGACGTACA CACAGTTG 18 (14) INFOPMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 13: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR 18 paires de bases (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (vi) ORIGINE: (C) INDIVIDU/ISOLE: ITIM N-term.FOR (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 13: GTGACGTACG CACAGTTG 18 (15) INFORD4ATIONS POUR LA SEQ ID NO: 14: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR 18 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: Autre acide nucléique (vi) ORIGINE: (C) INDIVIDU/ISOLE: Ext C-term BACK (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 14: ACCTGACTGT GGTGCTCG 18 (16) INFOPMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 15: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR 24 paires de bases ( S TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGUPATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: Autre acide nucléique (vi) ORIGINE: (C) INDIVIDU/ISOLE: pl40.FOR (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 15: ACCTACAGAT GTTATGGTTC TGTT 24 (17) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 16: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR 21 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGUPATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: Autre acide nucléique (vi) ORIGINE: (C) INDIVIDU/ISOLE: NKG2A.FOR (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 16: TCTACATTAA TACAGAGGCA C 21 (18) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 17: (i) CAPACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR 18 paires de bases ( S TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: Autre acide nucléique (vi) ORIGINE: (C) INDIVIDU/ISOLE: NKG2A/B/C. BACK (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 17: ATCTATAGAA AGCAGACT 18 (19) INFOPMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 18: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR 18 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGUPATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: Autre acide nucléique (vi) ORIGINE: (C) INDIVIDU/ISOLE: NKG2B FOR (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 18: ATTCCCTCAC GTCATTGT 18 (20) INFOPMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 19: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR 21 paires de bases ( S TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: Autre acide nucléique (vi) ORIGINE: (C) INDIVIDU/ISOLE: NKG2C.FOR (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 19: AGTAAACAAA GAGGAACCTT C 21 (21) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 20: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR 21 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: Autre acide nucléique (vi) ORIGINE: (C) INDIVIDU/ISOLE: NKG2D.FOR (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 20: AGCAAAGAGG ACCAGGATTT A 21 (22) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 21: (i) CAPACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR 21 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: Autre acide nucléique (vi) ORIGINE: (C) INDIVIDU/ISOLE: NKG2D. BkCK (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 21: CACAGTCCTT TGCATGCAGA T 21 (23) INFOSMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 22: (i) CARXCTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR 18 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURkTION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: Autre acide nucléique (vi) ORIGINE: (C) INDIVIDU/ISOLE: 5' hCD56 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 22: ATCCAGTACA CTGATGAC 18 (24) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 23: (i) CARXCTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR 18 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: Autre acide nucléique (vi) ORIGINE: (C) INDIVIDU/ISOLE: 3'hCD56 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 23: GTCGATGGAT GGTGAAGA 18 (25) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 24: (i) CARRCTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR 23 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: Autre acide nucléique (vi) ORIGINE: (C) INDIVIDU/ISOLE: 5' Actine (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 24: TACCACTGGC ATCGTGATGG ACT 23 (26) INFORATIONS POUR LA SEQ ID NO: 25: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR 23 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: Autre acide nucléique (vi) ORIGINE: (C) INDIVIDU/ISOLE: 3' Actine (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 25: TCCTTCTGCA TCCTGTCGGC AAT 23 (27) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 26: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR 6 acides aminés (B) TYPE: acide aminé (C) NOMBRE DE BRINS: (D) CONFIGURRTION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: peptide (iii) HYPOTHETIQUE: NON (iv) ANTI-SENS: NON (vi) ORIGINE: (C) INDIVIDU/ISOLE: (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 26 Lys Ile Pro Phe Thr Ile 1 5 (28) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 27 (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR 6 acides aminés (B) TYPE: acide aminé (C) NOMBRE DE BRINS (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: peptide (iii) HYPOTHETIQUE: NON (iv) ANTI-SENS NON (vi) ORIGINE: (C) INDIVIDU/ISOLE: (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 27 Lys Leu Pro Phe Thr Ile 1 5 REVENDICATIONS 1. Méthode in vitro de documentation d'un répertoire en immunorécepteur(s) NKR comprenant notamment les récepteurs KIR p58.1, p58.2, p70.INH, p140.INH, et les récepteurs NKG2A et NKG2 B, et/ou d'un répertoire en immunorécepteur (s) contrepartie(s) de NKR, comprenant notamment les récepteurs KAR p50.1, p50.2, p70.ACT, pl40.ACT, et les récepteurs NKG2C, NKG2D, NKG2E, NKG2F, ces immunorécepteurs étant ci-après désigné(s) récepteur(s) cible(s), caractérisée en ce qu'elle comprend i. l'utilisation d'au moins une paire d'oligonucléotides, l'un étant désigné oligonucléotide 3' et l'autre oligonucléotide 5', les oligonucléotides 3' et 5' d'une même dite paire étant tous deux capables, dans des conditions d'hybridation correspondant à une incubation pendant 1 min dans un tampon [Tris-HCl 20mM pH8,4; KCl 50mM; MgCl2 2,5mM] à une température comprise entre 500C et 650C environ, de s'hybrider à l'ADN ou à l'ADNc d'un récepteur cible NKR, ou contrepartie de NKR, mais ne s'hybridant pas, dans les mêmes conditions d'hybridation, avec l'ADN ou l'ADNc d'un récepteur contrepartie de NKR, ou respectivement d'un récepteur NKR, contrepartie fonctionnelle dudit récepteur cible, ii. la mise en contact de populations ADN ou ADNc d'un échantillon biologique d'origine humaine ou animale pour lequel on souhaite documenter le répertoire en immunorécepteur(s) cible(s), avec un excès d'au moins une paire d'oligonucléotides 3' et 5' selon i. dans des conditions favorables à l'hybridation de cette paire oligonucléotides 3' et 5' sur les ADN ou sur les ADNc de 1' échantillon biologique, et iii. la détection des hybrides éventuellement formés entre ces ADN ou ADNc et la ou les paire(s) d'oligonucléotides 3' et 5'. 2. Méthode selon la revendication 1, caractérisée en ce que ladite ou au moins une desdites paire(s) d'oligonucléotides 3' et 5' utilisée(s) est en outre capable, dans les mêmes conditions d'hybridation que celles définies sous i., de ne pas s'hybrider à l'ADN ou ADNc d'un récepteur, indifféremment NKR ou contrepartie de NKR, autre que ledit récepteur cible. 3. Méthode selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce que l' oligonucléotide 5' d'une dite paire d'oligonucléotides 3' et 5' utilisée pour un récepteur cible NKR (ou contrepartie de NKR) est capable dans les mêmes dites conditions d' hybridation de s'hybrider à l'ADN ou à l'ADNc d'un récepteur contrepartie de NKR (ou respectivement NKR), contrepartie fonctionnelle dudit récepteur cible NKR (ou respectivement contrepartie de NKR). 4. Méthode selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce que l'oligonucléotide 3' d'une dite paire d'oligonucléotides 3' et 5', utilisée pour un récepteur cible KAR, est capable, dans les mêmes dites conditions d'hybridation, de s'hybrider à l'ADN ou ADNc dudit récepteur cible KAR au niveau d'un enchaînement nucléotidique qui comprend une séquence correspondant, selon le code génétique universel, et en tenant compte de la dégénérescence dudit code, à la séquence d'acides aminés Lys Ile Pro Phe Thr Ile (K I P F T I) ou Lys Leu Pro Phe Thr Ile (K L P F T I) (SEQ ID n026 ou 27). 5. Méthode selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce que ladite (ou au moins une desdites) paire(s) d'oligonucléotides 3' et 5' ayant pour récepteur cible un récepteur KIR est choisie parmi le groupe de paires d' oligonucléotides 3' et 5' constitué par - un oligonucléotide 5' comprenant la séquence SEQ ID n01, ou une séquence en dérivant, et au moins un oligonucléotide 3' comprenant la séquence SEQ ID n05, n02, n06 ou n07, ou une séquence en dérivant, - un oligonucléotide 5' comprenant la séquence SEQ ID n04, ou une séquence en dérivant, et au moins un oligonucléotide 3' comprenant la séquence SEQ ID n05, n02, n06 ou n07, ou une séquence en dérivant, - un oligonucléotide 5' comprenant la séquence SEQ ID n09, ou une séquence en dérivant, et au moins un oligonucléotide 3' comprenant la séquence SEQ ID n05, n02, n06 ou n07, ou une séquence en dérivant, - au moins un oligonucléotide 5' comprenant la séquence SEQ ID ne10, ne11, ne12, ou n 13, ou une séquence en dérivant, et un oligonucléotide 3' comprenant la séquence SEQ ID n 14, ou une séquence en dérivant. 6. Méthode selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce que ladite (ou au moins une desdites) paire(s) d'oligonucléotides 3' et 5' ayant pour récepteur cible un récepteur KAR est choisie parmi le groupe de paires d'oligonucléotides 3' et 5' constitué par - un oligonucléotide 5' comprenant la séquence SEQ ID n"l, ou une séquence en dérivant, et un oligonucléotide 3' comprenant la séquence SEQ ID n03, ou une séquence en dérivant, - un oligonucléotide 5' comprenant la séquence SEQ ID n"8, ou une séquence en dérivant, et un oligonucléotide 3' comprenant la séquence SEQ ID n03, ou une séquence en dérivant, - un oligonucléotide 5' comprenant la séquence SEQ ID n"9, ou une séquence en dérivant, et un oligonucléotide 3' comprenant la séquence SEQ ID n03, ou une séquence en dérivant, - un oligonucléotide 5' comprenant la séquence SEQ ID ne15, ou une séquence en dérivant, et un oligonucléotide 3' comprenant la séquence SEQ ID n03, ou une séquence en dérivant. 7. Méthode selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce que ladite (ou au moins une desdites) paire(s) d'oligonucléotides 3' et 5' ayant pour récepteur cible un récepteur NKG2 est choisie parmi le groupe de paires d'oligonucléotides 3' et 5' constitué par - un oligonucléotide 5' comprenant la séquence SEQ ID n016, ou une séquence en dérivant, et un oligonucléotide 3' comprenant la séquence SEQ ID ne17, ou une séquence en dérivant, - un oligonucléotide 5' comprenant la séquence SEQ ID ne18, ou une séquence en dérivant, et un oligonucléotide 3' comprenant la séquence SEQ ID ne17, ou une séquence en dérivant, - un oligonucléotide 5' comprenant la séquence SEQ ID ne19, ou une séquence en dérivant, et un oligonucléotide 3' comprenant la séquence SEQ ID ne17, ou une séquence en dérivant, - un oligonucléotide 5' comprenant la séquence SEQ ID ne20, ou une séquence en dérivant, et un oligonucléotide 3' comprenant la séquence SEQ ID n021, ou une séquence en dé rivant. 8. Méthode selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce que les deux oligonucléotides 3' ou 5' d'une même dite paire sont chacun couplés à un marqueur, notamment couplée à un marqueur fluorescent ou radioactif, tel que du 32p, permettant la révélation des hybrides qu'ils forment éventuellement avec lesdites populations ADN ou ADNc dudit échantillon biologique. 9. Méthode selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce que ladite (ou lesdites) paire(s) d'oligonucléotide(s) 3' et 5' sert (servent) d' amorces respectivement 3' et 5' pour une extension par ADN polymérase. 10. Méthode selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce que lesdits hybrides éventuellement formés sont amplifiés par au moins une PCR préalablement à leur détection. 11. Méthode selon 1' une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce que lesdits hybrides éventuellement formés sont amplifiés par "Nested PCR" (double PCR emboîtée). 12. Méthode selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce que ladite détection des hybrides éventuellement formés comprend en outre la résolution sur gel de polyacrylamide du mélange réactionnel issu de la mise en contact, ainsi que la révélation de la présence ou de l'absence de bandes électrophorétiques contenant lesdits hybrides éventuellement formés. 13. Méthode selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce qu'elle est appliquée à la documentation d'un répertoire génotypique en immunorécepteurs NKR et/ou en immunorécepteurs contreparties de NKR 14. Méthode selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce qu'elle est appliquée à la documentation d'un répertoire d'expression en immunorécepteurs WR R et/ou en immunorécepteurs contreparties de NKR 15. Méthode selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce que ledit échantillon biologique d'origine humaine ou animale est du sang périphérique, de la moelle osseuse, des lymphocytes, des cellules NK et/ou T, des cellules transgéniques exprimant des immunorécepteurs, une fraction isolée à partir de ces échantillons. 16. Méthode selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce qu'elle est appliquée au criblage d'une banque d'organes, de tissus ou de cellules. 17. Méthode selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce qu'elle est appliquée à la prévision ou au suivi de l'acceptation ou du rejet, par un homme ou un animal, de cellules, tissu ou organe génétiquement différent (es). 18. Méthode selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce qu'elle est appliquée à la prévision ou au suivi de l'inocuité ou de la pathogénicité (GVH) d'une greffe ou transplantation, par un homme ou un animal, de cellules, tissu ou organe génétiquement différent (es ) . 19. Méthode selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce qu'elle est appliquée à la prévision ou au suivi, pour un homme ou un animal, d'un effet de type GVL de la part de cellules, tissu ou organe génétiquement différent (es ) . 20. Méthode selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce qu'elle est appliquée à la détermination de l'état d'activation de cellules W et/ou T à un instant donné chez un animal ou un homme. 21. Méthode selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce qu'elle est appliquée à la prévision ou au suivi de l'état de résistance d'un animal ou d'un homme vis-à-vis d'une infection virale, telle qu'une infection par un VIH, d'une infection parasitaire, telle que la malaria, d'une infection bactérienne, vis-àvis d'une maladie auto-immune, telle que la polyarthrite rhumatoïde, ou bien encore vis-à-vis du développement de cellules malignes telles que des cellules leucémiques. 22. Méthode selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée en ce qu' elle est appliquée au criblage de médicaments actifs vis-à-vis de maladies infectieuses, de maladies auto-immunes, ou de maladies tumo rales. 23. Kit pour la mise en oeuvre de la méthode selon l'une quelconque des revendications 1 à 22, caractérisé en ce qu'il comprend, dans un récipient, au moins une dite paire d'oligonucléotides 3' et 5' , les réactifs pour la réalisation de ladite ou lesdites méthode (s ) tels que tampon, marqueur (éventuellement couplé aux oligonucléotides de la dite paire), ainsi qu'un mode d'emploi.