Brevet FR2763958A1 — publié le 19981204

La présente invention concerne un produit associant un acide nucléique et une substance entraînant une désorganisation de la matrice extracellulaire d'une cellule, notamment la hyaluronidase, pour une utilisation simultanée, consécutive ou étalée dans le temps. Elle a également pour objet l'utilisation d'un tel produit dans le but de favoriser le transfert de l'acide nucléique en question dans une cellule ou un organisme hôte. Elle est particulièrement utile dans le domaine du transfert de gène ou de la thérapie génique. La matrice extracellulaire est constituée de molécules protéiques et polysaccharidiques assemblées en un réseau dense organisé dans l'espace extracellulaire de la plupart des tissus. Elle joue un rôle physiologique important de maintien de l'architecture tissulaire, de réservoir de facteurs trophiques, de chemoattracteurs et de facteurs d'attachement de cellules. Le hyaluronan (ou acide hyaluronique) est un constituant ubiquitaire de la matrice extracellulaire des vertébrés. Ce polysaccharide linéaire à base d'acide glucuronique et de glucosamine tD-glucuronic acid i -3 )N-acetyl-D-glucosamine( i -b-4)] peut influencer les caractéristiques physicochimiques des matrices de par sa propriété de former des solutions très visqueuses. L'acide hyaluronique interagit également avec divers récepteurs et protéines de liaison situés à la surface des cellules. Il est impliqué dans de nombreux processus biologiques tels que la fertilisation, le développement embryonnaire, la migration cellulaire et la différenciation, la cicatrisation, I'inflammation, la croissance tumorale et la formation de métastases. L'acide hyaluronique est hydrolysé par la hyaluronidase. Son hydrolyse entraîne une désorganisation de la matrice extracellulaire. La hyaluronidase est présente dans de nombreux liquides biologiques de l'organisme. Produite par lacrosome des spermatozoïdes, elle assure leur pénétration dans l'ovule lors de la fécondation. Durant l'embryogénèse, elle favorise la migration des cellules embryonnaires vers les territoires qu'elles doivent coloniser. Outre son action dans la plasticité et la différenciation tissulaire, le couple acide hyaluroniquefhyaluronidase serait également impliqué dans certains processus pathologiques. Ainsi, cette enzyme est mise à profit par les cellules cancéreuses pour l'extension des tumeurs et l'angiogénèse qui assure le support nutritif de ces tumeurs. Co-sécrétée dans de nombreux venins (serpents, lézards, poissons, scorpions, abeilles, araignées...), elle augmenterait leur diffusion dans l'organisme de la proie. Elle intervient également dans l'action tusogéne de virus comme le MLV (Moloney leukemia virus) ou le CAEV (Caprine arthritis encephalitis virus) Elle pourrait également agir en tant qu agent de diffusion de virus lors d'une contamination bactérienne comme dans le cas des infections à Herpes (Romano et Moisseiev, Metab. Pediatr. Syst. Ophtalmol. 1982, 6: 361-365). Par ailleurs, la hyaluronidase est utilisée depuis de nombreuses années en clinique humaine pour diverses applications : par exemple comme antioedémateux (Lasonil, Thiomucase), agent de diffusion de médicaments injectés par voie intramusculaire ou sous-cutanée (Hyaluronidase Choay), anti-cancéreux, dans la formulation d'anesthésiques locaux (Lewis-Smith, Br. J. Plast. Surg. 1986, 39: 554-558) ou encore en tant qu'agent réducteur de l'atteinte myocardique à la suite d'infarctus. La possibilité d'utiliser la hyaluronidase dans le domaine de la transfection d'ADN a déjà été évoquée par Dubensky et al. (Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1984, 81: 7529-7533). Ce document démontre une transfection plus uniforme in vivo par co-injection d'ADN plasmidique et d'un mélange de collagénase et de hyaluronidase. Cependant, l'effet bénéfique n'est pas obtenu avec un ADN plasmidique n'ayant pas été au préalable précipité au phosphate de calcium de sorte que l'exploitation de cette technologie en thérapie génique utilisant des vecteurs non précipités ou des particules virales est difficilement envisageable. La présente invention vise à étendre le potentiel thérapeutique de la hyaluronidase au domaine du transfert de gènes, notamment en thérapie génique. Il est important de pouvoir disposer d'outils favorisant la distribution des vecteurs de gènes ou l'expression de ces derniers au sein de l'organisme hôte pour améliorer l'efficacité de cette nouvelle technologie. La présente invention apporte une solution avantageuse à ce problème. On a maintenant mis en évidence les capacités de la hyaluronidase à favoriser le transfert ou l'expression d'un acide nucléique dans une cellule ou un organisme hôte. Comme le montrent les exemples qui suivent, I'administration intramusculaire d'une solution de hyaluronidase quelques heures avant l'injection dans le même muscle d'adénovirus recombinant augmente sensiblement l'expression du gène recombinant. Cette utilisation combinée améliore l'effet thérapeutique et permet l'emploi de doses réduites de vecteurs. C'est pourquoi la présente invention a pour objet un produit de combinaison comprenant au moins une substance entraînant une désorganisation d'une matrice extracellulaire d'un hôte et au moins un acide nucléique d'intérêt, pour une utilisation simultanée, consécutive ou étalée dans le temps. Le terme "matrice extracellulaire" bien connu dans le domaine de l'art est développé dans la partie introductive. Au sens de la présente invention, "substance entraînant une désorganisation de la matrice extracellulaire" désigne toute substance agissant sur l'intégrité de la matrice, notamment excerçant une action dégradative ou déstabilisante totale ou partielle sur l'un au moins des constituants de ladite matrice ou sur les liens qui unissent ces divers constituants. Dans le cadre de la présente invention, on peut avoir recours à une substance connue mais également, s'il s'agit d'une substance de nature protéique, à un mutant comportant une ou plusieurs mutations par addition, délétion et/ou substitution d'un ou plusieurs acides aminés de la protéine native, un fragment fonctionnel ou encore une protéine chimère provenant de la fusion de séquences d'origines diverses. Aux fins de la présente invention, ladite substance peut également être modifiée par voie chimique, enzymatique . . etc, dans le but d'augmenter son activité, sa stabilité ou encore son tropisme à l'égard d'un type cellulaire particulier. Le choix d'une substance en usage dans la présente invention est large. A titre indicatif, elle peut être choisie parmi les substances ayant une activité collagénase, dispase, trypsine, pronase. Selon un mode de réalisation avantageux, on préfère avoir recours à une substance capable d'hydrolyser les polysaccharides habituellement présents dans les matrices extracellulaires, et tout particulièrement l'acide hyaluronique. A cet égard, une substance ayant une activité hyaluronidase convient tout particulièrement à la mise en oeuvre de l'invention. Les hyaluronidases sont décrites dans Kreil (Protein Sci., 1995, 4: 1666-1669). Il peut s'agir d'une hyaluronidase dérivant d'une hyaluronate glycanohydrolase de mammifère, de reptile et d'hyménoptère, d'une hyaluronate glycanohydrolase de glande salivaire de sangsue ou d'une hyaluronate lyase bactérienne notamment de streptocoque, pneumocoque et clostridium. Parmi celles-ci, on préfère tout particulièrement la hyaluronidase de testicules bovins. On aura de préférence recours à une substance présentant un degré d'homologie avec la séquence d'une hyaluronidase ou un fragment fonctionnel de celle-ci d'au moins 70 %, de manière avantageuse d'au moins 90 % et, de manière préférée d'au moins 95 %, l'important étant que l'activité hyaluronidase soit conservée. Cette activité enzymatique peut être évaluée par les techniques conventionnelles telles que celles décrites dans Hynes et Ferretti (Methods Enzymol., 1994, 235: 606-616) ou Bailey et Levine (J. Pharm. Biomed. Anal., 1993, 11: 285-292). La substance composant le produit de combinaison selon l'invention peut être une substance disponible commercialement, de préférence acceptable d'un point de vue pharmaceutique. Selon une autre approche, il est possible de la produire par voie recombinante par les techniques classiques dans ce domaine de l'art. Enfin, on peut aussi envisager d'introduire la séquence codante pour ladite substance dans l'acide nucléique d'intérêt ou un vecteur d'expression sous le contrôle des éléments appropriés à son expression dans une cellule ou un organisme hôte. Ce dernier peut alors être administré préalablement ou simultanément à l'acide nucléique d'intérêt. La mise en oeuvre de ce mode de réalisation spécifique est à la portée de l'homme de l'art. Dans le cadre de la présente invention, l'acide nucléique d'intérêt peut être un oligonucléotide, un acide ribonucléique ou un acide désoxyribonucléique, sens ou antisens. Ces dénominations sont classiquement utilisées en biologie moléculaire. En bref, "sens" désigne un acide nucléique ayant une séquence homologue ou identique à une séquence cible alors que ante sens fait référence à un acide nucléique ayant une séquence homologue ou identique à une séquence complémentaire à une séquence cible. Conformément aux buts poursuivis par la présente invention, l'acide nucléique d'intérêt comporte au moins un gène d'intérêt et des éléments permettant son expression dans une cellule ou un organisme hôte. Il est avantageusement sous forme d'ADN plasmidique ou de vecteur viral (dérivé d'un adénovirus, rétrovirus, poxvirus et en particulier d'un virus de la vaccine ou d'un MVA, virus de l'herpès, virus associé à l'adénovirus... -). De manière optionnelle, l'acide nucléique d'intérêt peut être véhiculé par une particule virale infectieuse, un vecteur synthétique (lipide cationique, liposome, polymère cationique....) ou une cellule ingéniérée (cellule transfectée ou transduite par ledit acide nucléique) ou non ingéniérée (comportant naturellement ledit acide nucléique). S'agissant de la variante selon laquelle l'acide nucléique est sous forme d'ADN plasmidique, on indique que l'ADN est de préférence en solution dans de l'eau ou tout tampon aqueux et n'a pas subi de précipitation au phosphate de calcium préalablement à sa mise en solution. Le choix des plasmides utilisables dans le cadre de la présente invention est vaste. Ils peuvent être d'une origine quelconque (procaryote, eucaryote) ou être formés par l'assemblage d'éléments variés. D'une manière générale, les plasmides sont connus de l'homme de l'art. Un grand nombre d'entre eux sont disponibles commercialement mais, il est également possible de les construire par les techniques de manipulation génétique (Maniatis et al., 1989, Laboratory Manual, Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, NY). Il peut s'agir d'un vecteur de clonage ou d'expression dérivé par exemple de pBR322 (Gibco BRL), pUC (Gibco BRL), pBluescript (Stratagène), pREP4, pCEP4 (Invitrogene) ou encore p Poly (Lathe et al., Gene, 1987, 57: 193-201). A titre indicatif, l'ADN plasmidique en usage dans la présente invention peut être amplifié et purifié selon les pratiques générales de l'art. Etant donné qu'il s'agit d'une technologie largement connue à ce jour, il ne sera procédé qu'à une description brève de la manière d'opérer qui consiste à introduire le plasmide dans les cellules productrices (par exemple Escherichia coli), les cultiver dans des conditions adéquates (facilement établies par l'homme du métier sur la base des connaissances générales dans ce domaine et du système de sélection porté par le plasmide) et récupérer l'ADN plasmidique selon les techniques habituelles (voir par exemple Maniatis et al., 1989, supra). Une étape de purification peut également être envisagée, par exemple par mise en oeuvre du procédé décrit dans la demande française FR96 11075 ou tout autre méthode publiée dans la littérature. Selon une variante par ailleurs préférée, l'acide nucléique d'intérêt est porté par un vecteur adénoviral défectif pour la réplication (incapable de replication autonome dans une cellule hôte). La technologie des adénovirus est décrite dans l'état de la technique (voir par exemple Graham et Prevec in Methods in Molecular Biology, 1991, vol 7, p 109-128, ed E.J. Murey, The Human Press Inc). Avantageusement, le vecteur adénoviral utilisé dans le cadre de la présente invention, dérive du génome d'un adénovirus, comprend au moins les ITRs (Inverted Terminal Repeat) et une séquence d'encapsidation et est dépourvu de tout ou partie de la région adénovirale El. il peut en outre être dépourvu de tout ou partie de la région adénovirale E3. Cependant, selon un mode avantageux, on préfère conserver la partie de la région E3 codant pour des polypeptides permettant l'échappement au système immunitaire de l'hôte, notamment la glycoprotéine gp 19k (Gooding et al, Critical Review oflmmunology, 1990, 10 : 53-71). En outre, il peut comprendre des délétions ou mutations supplémentaires, touchant notamment tout ou partie d'une ou plusieurs régions sélectionnées parmi les régions E2, E4, L1, L2, L3, L4 et L5 (voir par exemple la demande internationale WO 94/28152). Pour illustrer ce point, on peut citer la mutation thermosensible affectant le gène DBP (pour DNA Binding Protein en anglais) de la région E2A (Ensinger et al., J. Virol., 1972, 10 : 328-339). Une autre variante ou une combinaison intéressante consiste à déléter la région E4 à l'exception des séquences codant pour les cadres de lecture ouverts (ORF) 6 et 7 (ces délétions limitées ne nécessitent pas de complémentation de la fonction E4 ; Ketner et al., Nucleic Acids Res., 1989, 17: 3037-3048). Préférentiellement, le ou les gènes d'intérêt sont insérés dans le vecteur en remplacement des régions adénovirales délétées, notamment de El. Dans le cas où l'on met en oeuvre plusieurs gènes d'intérêt, ils peuvent être insérés au même endroit ou à des endroits différents du génome viral, être sous le contrôle des mêmes éléments de régulation ou d'éléments indépendants et, le cas échéant, ils peuvent être en orientation réverse les uns par rapport aux autres afin de minimiser les phénomènes d'interférence au niveau de leur expression. Le génome du vecteur adénoviral recombinant peut être préparé par les techniques de biologie moléculaire ou par recombinaison homologue (voir WO 96/17070). La propagation des vecteurs adénoviraux utilisés dans le cadre de la présente invention, est effectuée dans une lignée de complémentation capable de fournir en trains la ou les fonctions défectueuses afin de produire les polypeptides nécessaires à la constitution des particules virales infectieuses. Par exemple, on aura recours à la lignée 293 pour complémenter la fonction El (Graham et al., J. Gen. Virol., 1977, 36: 59-72) ou les lignées décrites dans la demande internationale WO 97/04119 pour une double complémentation. On peut également employer une lignée cellulaire appropriée et un virus auxilliaire pour complémenter l'ensemble des fonctions défectives. Les particules virales produites sont récupérées de la culture cellulaire et, éventuellement purifiées par les techniques de l'art (gradient de chlorure de césium, étapes chromatographiques ....). Le vecteur adénoviral utilisé dans le cadre de la présente invention, peut dériver du génome d'un adénovirus d'origine humaine, canine, aviaire, bovine, murine, ovine, porcine ou simienne ou encore d'un hybride comprenant des fragments de génome adénoviral de différentes origines. On peut citer plus particulièrement les adénovirus CAV-1 ou CAV-2 d'origine canine, DAV d'origine aviaire ou encore Bad de type 3 d'origine bovine (Zakharchuk et al., Arch. Virol., 1993, 128: 171-176 , Spibey et Cavanagh, J. Gen. Virol., 1989, 70:165-172 Jouvenne et al., Gene, 1987, 60: 21-28 ; Mittal et al., J. Gen. Virol., 1995, 76: 93102). Cependant, on préférera un vecteur adénoviral d'origine humaine dérivant de préférence d'un adénovirus de sérotype C, notamment de type 2 ou 5. En ce qui concerne l'acide nucléique d'intérêt, il peut coder pour un ARN ante sens et/ou un ARNm qui sera ensuite traduit en un polypeptide d'intérêt thérapeutique. Il peut être de type génomique, ADN complémentaire (ADNc) ou mixte (minigène, dans lequel au moins un intron est délété), être homologue ou hétérologue à la cellule hôte. Le polypeptide pour lequel il code peut correspondre à tout ou partie d'une protéine telle que trouvée dans la nature (protéine native ou tronquée) ou un mutant présentant des propriétés biologiques améliorées et/ou modifiées. I1 peut également s'agir d'un polypeptide chimère provenant de la fusion de séquences d'origines diverses. L'acide nucléique d'intérêt peut être obtenu par synthèse chimique ou par clonage (criblage de banque d'ADN à l'aide de sondes appropriées, PCR...) et peut être modifié par les techniques conventionnelles de biologie moléculaire. Dans le cadre de la présente invention, il peut être avantageux d'utiliser un gène d'intérêt codant pour une cytokine ou une lymphokine (interféron a, ss ou y, interleukine (IL), notamment 1'IL-2, 1'IL-6, 1'IL-10 ou encore l'IL- 12, un facteur nécrosant des tumeurs (TNF), un facteur stimulateur de colonies (GM-CSF, C CSF, M-CSF...), un récepteur cellulaire ou nucléaire (notamment ceux reconnus par le virus Hie), un ligand de récepteur, une protéine impliquée dans une maladie génétique (facteur VII, facteur VIII, facteur IX, dystrophine, insuline, protéine CFTR (Cystic Fibrosis Transmembrane Conductance Regulator), hormone de croissance....), une enzyme (uréase, rénine, thrombine....), un inhibiteur d'enzyme (a 1-antitrypsine, antithrombine III, inhibiteurs de protéases virales...), un polypeptide à effet anti-tumoral capable d'inhiber au moins partiellement l'initiation ou la progression de tumeurs ou cancers (ARN anti-sens, anticorps, inhibiteur agissant au niveau de la division cellulaire ou des signaux de transduction, produit d'expression d'un gène suppresseur de tumeur, par exemple p53 ou Rb, protéine stimulant le système immunitaire, antigène associé à une tumeur, notamment MUC1 et E6, E7, L1, L2 d'un virus à papillome HPV....), un antigène du complexe majeur d'histocompatibilité des classes I ou II ou un polypeptide agissant sur l'expression des gènes correspondants, un polypeptide capable d'inhiber une infection virale, bactérienne ou parasitaire ou son développement (polypeptide immunoprotecteur, épitope antigénique, anticorps, variant trans-dominant...), un produit cytotoxique (thymidine kinase de virus simplex de l'herpès 1 (TK-HSV-I), ricine, toxine cholérique, diphtérique ), une immunotoxine ou encore un polypeptide marqueur (P-galactosidase, luciférase....). Il est à signaler que cette liste n'est pas limitative et que d'autres gènes peuvent également être employés. Par ailleurs, l'acide nucléique d'intérêt en usage dans la présente invention peut également comprendre un gène de sélection permettant de sélectionner ou identifier les cellules transfectées. On peut citer les gènes néo (codant pour la néomycine phosphotransférase) conférant une résistance à l'antibiotique G418, dhfr (Dihydrofolate Réductase), CAT (Chloramphenicol Acetyl transférase), pac (Puromycine Acétyl-Transferase) ou encore gpt (Xanthine Guanine Phosphoribosyl Transferase). D'une manière générale, les gènes de sélection sont connus de l'homme de l'art. Le ou les gènes portés par l'acide nucléique d'intérêt sont placés sous le contrôle des éléments nécessaires à leur expression dans la cellule ou l'organisme hôte. Il s'agit des éléments permettant leur transcription en ARN et la traduction d'un ARNm en polypeptide. Parmi ceux-ci, le promoteur revêt une importance particulière. Il peut être isolé d'un gène quelconque d'origine eucaryote ou même virale et peut être constitutif ou régulable. Alternativement, il peut s'agir du promoteur naturel du gène en question. Par tailleurs, il peut être modifié de manière à améliorer l'activité promotrice, supprimer une région inhibitrice de la transcription, rendre un promoteur constitutif régulable ou vice versa, introduire un site de restriction... On peut mentionner, à titre d'exemples, les promoteurs viraux CMV (Cytomégalovirus), RSV (Rous Sarcoma Virus), du gène TK du virus HSV- 1, précoce du virus SV40 (Simian Virus 40), adénoviral MLP (Major Late Promoter) ou encore les promoteurs eucaryotes des gènes PGK (Phospho Glycerate kinase) murin ou humain, a 1 -antitrypsine (foie-spécifique), immunoglobuline (lymphocyte-spécifique), surfactant, CFTR (poumon spécifique) ou actine (muscle spécifique). Bien entendu, L'acide nucléique d'intérêt peut en outre comprendre des éléments additionnels améliorant l'expression (séquence intronique, séquence signal, séquence de localisation nucléaire, séquence terminatrice de la transcription, site d'initiation de la traduction de type IRES ou autre....) ou encore à sa maintenance dans la cellule hôte (origine de réplication ...). De tels éléments sont connus de l'homme de l'art. Comme indiqué précédemment, l'acide nucléique d'intérêt et la substance entraînant une désorganisation de la matrice extracellulaire compris dans le produit de combinaison selon l'invention peuvent être utilisés simultanément, consécutivement ou de manière étalée dans le temps. Simultanément fait référence à une co-administration. Dans ce cas, ces deux composantes essentielles peuvent être mélangées préalablement à l'administration ou peuvent être administrées en même temps dans la cellule ou l'organisme hôte. Il est également possible de les administrer consécutivement c'est à dire l'une après l'autre, quelle que soit la composante du produit de combinaison selon l'invention administrée en premier. Enfin, on peut avoir recours à un mode d'administration étalé dans le temps ou intermittent qui s'arrête et reprend à intervalle régulier ou non. On indique que les voies et les sites d'administration des deux composantes peuvent être différents. Selon un mode de réalisation particulièrement préféré, la substance entraînant une désorganisation de la matrice extracellulaire est administrée avant l'acide nucléique, la voie d'administration des deux composantes étant de préférence semblable (par exemple intramusculaire dans les deux cas). L'intervalle de temps entre les injections n'est pas critique et peut être défini par l'homme de l'art. On peut recommander un intervalle de 10 min à 72 h, avantageusement de 30 min à 48 h, de préférence de 1 à 24 h et, de manière tout à fait préférée, de 1 à 6 h. Par tailleurs, le produit de combinaison selon l'invention peut également être associé à une ou plusieurs molécules destinée à améliorer l'administration d'acide nucléique. II peut s'agir de molécules ayant un effet protecteur sur l'acide nucléique (protection à l'égard de la dégradation cellulaire), améliorant sa pénétration ou son expression dans la cellule hôte (peptide fusogène, signal de localisation nucléaire...), permettant le ciblage d'un type cellulaire particulier (ligand ou anticorps reconnaissant une protéine de surface cellulaire...), ou prolongeant l'effet thérapeutique (agent immunosuppresseur....). Il peut être également associé à des agents facilitant la transfection (protéines ...). Le produit de combinaison selon l'invention peut être préparé en vue d'une administration locale parentérale ou par voie digestive. On peut citer notamment la voie intragastrique, sous-cutanée, intracardiaque, intraveineuse, intrapéritonéale, intrasynoviale, intratumorale, intrapulmonaire, intranasale ou intratrachéale et, tout particulièrement, intramusculaire. L'administration peut avoir lieu par toute technique de l'art (injection, voie orale, aérosol, instillation...), en dose unique ou répétée une ou plusieurs fois après un certain délai d'intervalle. La voie d'administration peut être adaptée selon le gène d'intérêt à transférer et la maladie à traiter. La formulation peut inclure des véhicules (excipients, adjuvants...) pharmaceutiquement acceptables. De préférence, la substance entraînant une désorganisation de la matrice extracellulaire et l'acide nucléique d'intérêt sont en solution dans un tampon approprié à un usage pharmaceutique qui peut être hyper, hypo ou isotonique. Les tampons envisageables sont variés. On peut citer à titre illustratif, une solution saline physiologique (NaCI 0,9 %), une solution saline non physiologique (NaCI 1,8 %), une solution Hépes-Ringer, de Lactate-Ringer, un tampon à base de Tris-HCl (Tris-HC1 10 mM pH 7,5 à 8, EDTA 1 mM ,Tris-HCl 10 mM pH 7,5 à 8, MgCl2 1 mu), un tampon phosphate (tampon phosphate H2O Krebs), une solution de sucre (glucose, saccharose, tréhalose....) ou simplement de l'eau. Avantageusement, le produit de combinaison selon l'invention contient une quantité de substance entraînant une désorganisation de la matrice extracellulaire suffisante pour améliorer la diffusion de l'acide nucléique d'intérêt, en particulier au niveau ou à proximité du site d'injection. La quantité nécessaire varie en fonction de différents paramètres, par exemple de la substance choisie, de la voie d'administration, du tissu cible, de l'individu à traiteur, ou de l'étendue de la zone à traiter. S'agissant de la hyaluronidase, la quantité adéquate peut correspondre à celles habituellement utilisées dans les applications d'agent de diffusions de molécules pharmacologiques. A titre indicatif, la dose à mettre en oeuvre est comprise entre 1 et 104 unités internationales (tir), avantageusement entre 1 et 103 et de préférence entre 10 et 500 IU. Par ailleurs la quantité d'acide nucléique d'intérêt peut être définie en fonction du gène thérapeutique et du vecteur utilisé. S'agissant de la variante selon laquelle on met en oeuvre des particules adénovirales, celles-ci sont de préférence formulées sous forme de doses comprises entre 104 et 1014 ufp (unités formant des plages), avantageusement 10S et 10l3 ufp et, de préférence, 106 et 10'2ufp. Dans le cas où l'acide nucléique d'intérêt est sous forme d'un ADN plasmidique, les quantités peuvent varier de 0,05 à 100 mg et avantageusement de 0,1 à 10 mg. La présente invention concerne également l'utilisation à des fins thérapeutiques ou vaccinales d'un produit de combinaison selon l'invention pour la préparation d'un médicament destiné au traitement du corps humain ou animal par thérapie génique ainsi que l'utilisation d'une substance entraînant une désorganisation de la matrice extracellulaire pour améliorer la diffusion, le transfert et/ou l'expression d'un acide nucléique d'intérêt dans une cellule ou un organisme hôte. L'organisme hôte est avantageusement un mammifère, de préférence l'homme. Quant à la cellule hôte, il peut s'agir d'une cellule primaire ou tumorale d'une origine hématopoïétique (cellule souche totipotente, leucocyte, monocyte, lymphocyte, macrophage....), musculaire (cellule satellite, myocyte, myoblaste....), hépatique, épithéliale, fibroblaste, pulmonaire ou trachéale. Selon une première possibilité, le médicament ou la substance peut être administré directement in vivo (par exemple par injection intraveineuse, intramusculaire, dans une tumeur accessible, dans les voies respiratoires par aérosol...). On peut également adopter l'approche ex vivo qui consiste à prélever des cellules du patient (cellules souches de la moëlle osseuse, lymphocytes du sang périphérique...), à les traiter in vitro avant de les réadminister au patient. La substance entraînant une désorganisation de la matrice extracellulaire est de préférence une hyaluronidase et, selon un mode préféré déjà cité, elle est administrée préalablement à l'acide nucléique d'intérêt. L'invention s'étend également à une méthode de traitement et/ou la prévention selon laquelle on administre une quantité thérapeutiquement efficace d'un produit de combinaison selon l'invention à un patient ayant besoin d'un tel traitement. Les maladies ciblées sont notamment les maladies génétiques (hémophilie, mucoviscidose, diabète, myopathie de Duchenne ou de Becker...), les cancers et tumeurs (éventuellement induits par des oncogènes ou des virus), les infections virales (hépatites B et C, SIDA, herpès....). Un produit de combinaison administrable par voie intramusculaire ou intraveineuse et associant la hyaluronidase et un acide nucléique exprimant le gène de la dystrophine convient tout particulièrement au traitement par thérapie génique de la dystrophie musculaire de Duchenne. En effet, les muscles atteints sont le siège d'une invasion de tissu conjonctif (et donc, de matrice extracellulaire). Un traitement par la hyaluronidase pourrait permettre d'accroître les possibilités de diffusion de l'acide nucléique d'intérêt et sa instillation....) ou intraveineuse d'un acide nucléique exprimant la protéine CFTR. EXEMPLE La présente invention est illustrée, sans pour autant être limitée, par l'exemple suivant: L'acide nucléique d'intérêt comportant le gène rapporteur luciférase placé sous le contrôle du promoteur MLP d'Ad2 et des séquences de polyadénylation du virus SV40, est porté par un vecteur adénoviral délété des régions El et E3. La construction finale désignée pTG8509 est réalisée selon les techniques générales de génie génétique et clonage moléculaire détaillées dans Maniatis et al. (1989, supra). La première étape consiste à cloner la cassette d'expression du gène luciférase dans un plasmide bactérien. On peut par exemple introduire le gène luciférase dans le plasmide pTG6580 (décrit dans la demande internationale WO 94/28152), qui comprend dans une structure p poly II (Lathe et al., 1987, supra) I'ITR 5' et la région d'encapsidation de 1'Ad5 (nt 1 à 458 tels que divulgués dans la banque de données Genebank sous la référence M73260), le promoteur MLP de l'Ad2, un polylinker, le signal de terminaison de la transcription polyA de SV40 (nt 2543 à 2618 tels que divulgués dans la banque de données Genebank sous la référence J02400) suivis des séquences Ad5 des nt 4047 à 6241. Puis, la cassette luciférase est insérée dans le squelette adénoviral à la place de la région El par recombinaison homologue avec le vecteur pTG3602 (voir demande internationale WO 96/17070) linéarisé par ClaI et dans la souche E. coli BJ5 183 (Hanahan, J. Mol. Biol., 1983, 166: 557-580). Les particules adénovirales correspondantes sont produites après transfection de la lignée 293 (ATCC CRL1573) par le fragment PacI isolé du vecteur pTG8509 et portant le génome adénoviral et récupérées de la culture après lyse cellulaire (habituellement 3 cycles consécutifs de congélation-décongélation). Les particules adénovirales AdTG8509 sont amplifiées et purifiées sur gradient de chlorure de césium avant leur administration in vivo. Le produit de combinaison testé associe 109 unités infectieuses d'AdTG8509 et des doses variables de hyaluronidase de testicules bovins obtenues par dilution d'une préparation lyophilisée (type VI-S, Sigma à 3100 UI) dans NaCl 0,9 %. Dix souris femelles balb/c agées de 7 semaines sont réparties au hasard en 5 groupes d'expérimentation recevant dans les deux muscles tibialis anterior 25 pl d'une solution de hyaluronidase dont les doses s'échelonnent de 0 UI, 0,05 UI, 0,1 UI, 1 UI et 10 UI et 3 heures après, 25 pl d'une suspension virale d'AdTG8509 titrant 109 unités infectieuses. Le transfert du gène luciférase est évalué après réssection de chaque muscle traité, une semaine après les injections de la hyaluronidase et du vecteur. Les animaux sont sacrifiés par dislocation cervicale et les muscles sont immédiatement prélevés et congelés dans l'azote liquide et stockés à -80"C. L'activité luciférase est mesurée au luminomètre (Microlumat LB 96P, Berthold) après broyage du muscle entier et extraction de l'enzyme (Kit Promega). Cette activité enzymatique se traduit en émission de photons exprimée en unités de lumière par minute (RLU). L'administration de hyaluronidase à des doses supérieures à 1 UI s'accompagne d'une augmentation significative de l'expression du gène luciférase par rapport au groupe témoin (0 UI). Le facteur d'amplification est d'environ 2 chez les animaux traités par 1 UI de hyaluronidase bovine préalablement à l'injection des adénovirus recombinants et 4 chez ceux ayant reçu 10 UI de l'enzyme. L'expérience est répétée dans des souris femelles C57 BL/10 agées de 7 semaines en mettant en oeuvre des doses supérieures de hyaluronidase. On constitue 5 groupes de 3 animaux traités par des doses variables de hyaluronidase bovine pour un volume fixe d'injection de 25 pl puis 3 heures après par 109 unités infectieuses d'adénovirus AdTG8509 (25 ul) Les cinq groupes d'animaux recoivent respectivement 0, 1, 10, 25 et 50 Ut de hyaluronidase diluée dans NaCI 0,9 %. Comme précédemment, enzyme et virus sont injectés consécutivement dans les deux muscles tibialis anterior des souris. Toutes les souris C57 BL/ 10 traitées par la hyaluronidase expriment des niveaux supérieurs de luciférase par rapport au groupe témoin (0 UI). Un facteur d'amplification d'environ 10 est obtenu pour le produit associant les adénovirus recombinants et 10 UI de hyaluronidase. Revendications l. Produit de combinaison comprenant au moins une substance entraînant une désorganisation de la matrice extracellulaire d'une cellule et au moins un acide nucléique d'intérêt, pour une utilisation simultanée, consécutive ou étalée dans le temps. 2. Produit de combinaison selon la revendication 1, caractérisé en ce que ladite substance entraînant une désorganisation de la matrice extracellulaire d'une cellule est une substance capable d'hydrolyser l'acide hyaluronique de ladite matrice. 3. Produit de combinaison selon la revendication 2, caractérisé en ce que ladite substance capable d'hydrolyser l'acide hyaluronique dérive d'une hyaluronidase. 4. Produit de combinaison selon la revendication 3, caractérisé en ce que ladite hyaluronidase dérive d'une hyaluronate glycanohydrolase de mammifère, de reptile ou d'hyménoptère, d'une hyaluronate glycanohydrolase de glande salivaire de sangsue ou d'une hyaluronate lyase bactérienne notamment de streptocoque, pneumocoque ou clostridium et, en particulier, de la hyaluronidase de testicules bovins. 5. Produit de combinaison selon l'une des revendications I à 4, caractérisé en ce que l'acide nucléique d'intérêt est sous forme d'ADN plasmidique ou de vecteur viral. 6. Produit de combinaison selon l'une des revendications 1 à 5, caractérisé en ce que l'acide nucléique d'intérêt est véhiculé par une particule virale infectieuse, un vecteur synthétique, une cellule ingéniérée ou une cellule non ingéniérée. 7. Produit de combinaison selon la revendication 5 ou 6, caractérisé en ce que l'acide nucléique d'intérêt est sous forme d'un vecteur adénoviral recombinant défectif pour la réplication. 8. Produit de combinaison selon la revendication 7, caractérisé en ce que le vecteur adénoviral dérive du génome d'un adénovirus et comprend au moins les ITRs et une séquence d'encapsidation et est dépourvu de tout ou partie de la région adénovirale El. 9. Produit de combinaison selon la revendication 8, caractérisé en ce que le vecteur adénoviral est en outre dépourvu de tout ou partie de la région adénovirale E3. 10. Produit de combinaison selon la revendication 8 ou 9, caractérisé en ce que le vecteur adénoviral est en outre dépourvu de tout ou partie d'une ou plusieurs régions sélectionnées parmi les régions E2, E4, L1, L2, L3, L4 et L5. il. Produit de combinaison selon l'une des revendications 7 à 10, caractérisé en ce que le vecteur adénoviral dérive du génome d'un adénovirus d'origine humaine, canine, aviaire, bovine, munne, ovine, porcine ou simienne ou encore d'un hybride comprenant des fragments de génome adénoviral de différentes origines. 12. Produit de combinaison selon la revendication 11, caractérisé en ce que le vecteur adénoviral dérive du génome d'un adénovirus humain de type 5. 13. Produit de combinaison selon l'une des revendications 1 à 10, caractérisé en ce que l'acide nucléique d'intérêt code pour un ARN antisens ou un polypeptide d'intérêt thérapeutique. 14. Produit de combinaison selon la revendication 13, caractérisé en ce que le polypeptide d'intérêt thérapeutique est sélectionné parmi une cytokine, un récepteur cellulaire ou nucléaire, un ligand, un facteur de coagulation, la protéine CFTR, l'insuline, la dystrophine, une hormone de croissance, une enzyme, un inhibiteur d'enzyme, un polypeptide à effet anti-tumoral, un polypeptide capable d'inhiber une infection bactérienne, parasitaire ou virale et, notamment le VIH, un anticorps, une toxine, une immunotoxine et un marqueur. 15. Produit de combinaison selon l'une des revendications 1 à 14, caractérisé en ce qu'il est formulé dans un véhicule acceptable d'un point de vue pharmaceutique. 16. Produit de combinaison selon l'une des revendications 1 à 15, caractérisé en ce qu'il comprend une quantité de ladite substance entraînant une désorganisation de la matrice extracellulaire comprise entre 1 et 104 unités internationales (il), avantageusement entre 1 et 1 et de préférence entre 10 et 500 W. 17. Produit de combinaison selon l'une des revendications 1 à 16, caractérisé en ce en ce que ladite substance entraînant une désorganisation de la matrice extracellulaire est administrée avant l'acide nucléique d'intérêt. 18. Utilisation d'un produit de combinaison selon l'une des revendications I à 17, pour la préparation d'un médicament destiné au traitement du corps humain ou animal par thérapie génique. 19. Utilisation selon la revendication 18, caractérisée en ce que ledit produit de combinaison comprend une substance entraînant une désorganisation de la matrice extracellulaire dérivant d'une hyaluronidase, notamment de la hyaluronidase de testicules bovins, et un acide nucléique d'intérêt sous forme d'un vecteur adénoviral véhiculé par une particule adénovirale infectieuse. 20. Utilisation selon la revendication 18 ou 19, caractérisée en ce que ladite substance entraînant une désorganisation de la matrice extracellulaire est administrée avant l'acide nucléique. 21. Utilisation selon l'une des revendications 18 à 20, pour la préparation d'un médicament destiné au traitement de la myopathie de Duchenne, par administration intramusculaire ou intraveineuse d'une hyaluronidase et d'un acide nucléique d'intérêt exprimant le gène codant pour la dystrophine. 22. Utilisation selon l'une des revendications 18 à 20, pour la préparation d'un médicament destiné au traitement de la mucoviscidose, par administration intraveineuse ou dans les voies respiratoires d'une hyaluronidase et d'un acide nucléique exprimant le gène codant pour la protéine CFTR. 23. Utilisation d'une substance entraînant une désorganisation de la matrice extracellulaire pour améliorer la diffusion, le transfert et/ou l'expression d'un acide nucléique d'intérêt dans une cellule ou un organisme hôte.