Brevet FR2750433A1 — publié le 19980102

PROCEDE DE PRODUCTION D'ADENOVIRUS RECOMBINANTS La présente invention concerne un nouveau procédé pour la production d'adénovirus recombinants. Elle concerne également les préparations virales purifiées produites selon ce procédé. Les adénovirus présentent certaines propriétés particulièrement avantageuses pour une utilisation comme vecteur de transfert de gènes en thérapie génique. Notamment, ils ont un spectre d'hôte assez large, sont capables d'infecter des cellules quiescentes, ne s'intègrent pas au génome de la cellule infectée, et n'ont pas été associés à ce jour à des pathologies importantes chez l'homme. Les adénovirus ont ainsi été utilisés pour transférer des gènes d'intérêt dans le muscle (Ragot et al., Nature 361 (1993) 647), le foie (Jaffe et al., Nature genetics 1 (1992) 372), le système nerveux (Aidi et al., Nature genetics 3 (1993) 224), etc. Les adénovirus sont des virus à ADN double brin linéaire d'une taille de 36 (kilobases) kb environ. Leur génome comprend notamment une séquence inversée répétée (1il) à chaque extrémité, une séquence d'encapsidation (Psi), des gènes précoces et des gènes tardifs. Les principaux gènes précoces sont contenus dans les régions El, E2, E3 et E4. Parmi ceux-ci, les gènes contenus dans la région El notamment sont nécessaires à la propagation virale. Les principaux gènes tardifs sont contenus dans les régions L1 à L5. Le génome de l'adénovirus Ad5 a été entièrement séquencé et est accessible sur base de données (voir notamment Genebank M73260). De même des parties, voire la totalité d'autres génomes adénoviraux (Ad2, Ad7, Ad 12, etc) ont également été séquencées. Pour leur utilisation en thérapie génique, différents vecteurs dérivés des adénovirus ont été préparés, incorporant différents gènes therapeutiques. Dans chacune de ces constructions, radénovirus a été modifié de manière à le rendre incapable de réplication dans la cellule infectée. Ainsi, les constructions décrites dans l'art antérieur sont des adénovirus délétés de la région El, essentielle à la réplication virale, au niveau de laquelle sont insérées les séquences d'ADN hétérologue (Lavrero et al., Gene 101 (1991) 195 ; Gosh-Choudhury et al., Gene 50 (1986) 161). Par ailleurs, pour améliorer les propriétés du vecteur, il a été proposé de créer d'autres délétions ou modifications dans le génome de l'adénovirus. Ainsi, une mutation ponctuelle thermosensible a été introduite dans le mutant ts125, permettant d'inactiver la protéine de 72kDa de liaison à l'ADN (DBP) (Van der Vliet et al., 1975). D'autres vecteurs comprennent une deletion d'une autre région essentielle à la réplication et/ou à la propagation virale, la région E4. La région E4 est en effet impliquée dans la régulation de l'expression des gènes tardifs, dans la stabilité des ARN nucléaires tardifs, dans l'extinction de l'expression des protéines de la cellule hôte et dans l'efficacité de la réplication de l'ADN viral. Des vecteurs adénoviraux dans lesquels les régions El et E4 sont délétées possèdent donc un bruit de fond de transcription et une expression de gènes viraux très réduits. De tels vecteurs ont ete decrits pas exemple dans les demandes W094/28152, W095/02697, PCT/FR96/00088). En outre, des vecteurs portant une modification au niveau du gène IVa2 ont également été décrits (WO96/1 0088). Les adénovirus recombinants décrits dans la littérature sont produits a partir de différents sérotypes d'adénovirus. I1 existe en effet différents sérotypes d'adénovirus, dont la structure et les propriétés varient quelque peu, mais qui présentent une organisation génétique comparable. Plus particulièrement, les adénovirus recombinants peuvent être d'origine humaine ou animale. Concernant les adénovirus d'origine humaine, on peut citer préférentiellement ceux classés dans le groupe C, en particulier les adénovirus de type 2 (Ad2), 5 (Ad5), 7 (Ad7) ou 12 (Ad12). Parmi les différents adénovirus d'origine animale, on peut citer préférentiellement les adénovirus d'origine canine, et notamment toutes les souches des adénovirus CAV2 [souche manhattan ou A26/61 (ATCC VR-800) par exemple]. D'autres adénovirus d'origine animale sont cités notamment dans la demande W094/26914 incorporée à la présente par référence. Dans un mode préféré de mise en oeuvre de l'invention, radénovirus recombinant est un adénovirus humain du groupe C. De manière plus préférentielle, il s'agit d'un adénovirus Ad2 ou Ad5. Les adénovirus recombinants sont produits dans une lignée d'encapsidation, c'est-à-dire une lignée de cellules capables de complémenter en trans une ou plusieurs des fonctions déficientes dans le génome adénoviral recombinant. L'une de ces lignées est par exemple la lignée 293 dans laquelle une partie du génome de l'adénovirus a été intégrée. Plus précisément, la lignée 293 est une lignée de cellules embryonnaires humaines de rein contenant l'extrémité gauche (environ 11-12 to) du génome de l'adénovirus sérotype 5 (Ad5), comprenant rITR gauche, la région d'encapsidation, la région El, incluant Ela et Elb, la région codant pour la protéine pIX et une partie de la région codant pour la protéine pIVa2. Cette lignée est capable de transcomplémenter des adénovirus recombinants défectifs pour la région El, c'est-à-dire dépourvus de tout ou partie de la région El, et de produire des stocks viraux ayant des titres élevés. Cette lignée est également capable de produire, à température pennissive (32"C), des stocks de virus comportant en outre la mutation E2 thermosensible. D'autres lignées cellulaires capables de complémenter la région El ont été décrites, basées notamment sur des cellules de carcinome de poumon humain A549 (WO94/28152) ou sur des rétinoblastes humains (Hum. Gen. Ther. (1996) 215). Par ailleurs, des lignées capables de trans-complémenter plusieurs fonctions de l'adénovirus ont également été décrites. En particulier, on peut citer des lignées complémentant les régions El et E4 (Yeh et al., J. Virol. 70 (1996) 559; Cancer Gen. Ther. 2 (1995) 322 ; Krougliak et al., Hum. Gen. Ther. 6 (1995) 1575) et des lignées complémentant les régions El et E2 (W094/28152, W095/02697, WO95/27071). Les adénovirus recombinants sont habituellement produits par introduction de l'ADN viral dans la lignée d'encapsidation, suivie d'une lyse des cellules après environ 2 ou 3 jours (la cinétique du cycle adénoviral étant de 24 à 36 heures). Après la lyse des oellules, les particules virales recombinantes sont isolées par centrifugation en gradient de chlorure de césium. Pour la mise en oeuvre du procédé, l'ADN viral introduit peut être le génome viral recombinant complet, eventuellement construit dans une bacterie (ST 95010) ou dans une levure (W095/03400), transfecté dans les cellules. ll peut également s'agir d'un virus recombinant utilisé pour infecter la lignée d'encapsidation. L'ADN viral peut aussi être introduit sous forme de fragments portant chacun une partie du génome viral recombinant et une zone d'homologie permettant, après introduction dans la cellule d'encapsidation, de reconstituer le génome viral recombinant par recombinaison homologue entre les différents fragments. Un procédé classique de production d'adénovirus comprend ainsi les étapes suivantes : Les cellules (par exemple les oellules 293) sont infectées en boite de culture avec un préstock viral à raison de 3 à 5 particules virales par cellule (Multiplicity of Infection (MOI) = 3 à 5), ou transfectées avec l'ADN viral. L'incubation dure ensuite de 40 à 72 heures. Le virus est alors libéré du noyau par lyse des cellules, généralement par plusieurs cycles de décongélation successifs. Le lysat cellulaire obtenu est ensuite centrifugé à basse vitesse (2000 à 4000 rpm) et le surnageant (lysat cellulaire clarifié) est ensuite purifié par centrifugation en présence de chlorure de cesium en deux étapes: - Une première centrifugation rapide de 1,5 heure sur deux couches de chlorure de césium de densités 1,25 et 1,40 encadrant la densité du virus (1,34) de façon à séparer le virus des protéines du milieu; - Une deuxième centrifugation en gradient plus longue (de 10 à 40 heures selon le rotor utilisé), qui constitue la véritable et unique étape de purification du virus. Généralement, après la seconde étape de centrifugation, la bande du virus est majoritaire. On observe néanmoins deux bandes moins denses, fines, dont l'observation en microscopie électronique a montré qu'il s'agissait de particules virales vides ou cassées pour la bande la plus dense, et de sous unités virales (pentons, hexons) pour la bande la moins dense. Après cette étape, le virus est récolté par ponction à l'aiguille dans le tube de centrifugation et le césium est éliminé par dialyse ou dessalage. Bien que les niveaux de pureté obtenus soient satisfaisants, ce type de procédé présente cependant certains inconvenients. En particulier, il est basé sur l'emploi de chlorure de césium, qui est un réactif incompatible avec une utilisation thérapeutique chez Comme. De ce fait, il est impératif d'éliminer le chlorure de césium à l'issue de la purification. Ce procédé présente en outre certains autres inconvénients mentionnés plus loin, limitant son utilisation à une échelle industrielle. Pour remédier a ces problèmes, il a été proposé de purifier le virus obtenu après la lyse, non pas par gradient de chlorure de césium, mais par chromatographie. Ainsi, l'article de Huyghe et al. (Hum. Gen. Ther. 6 (1996) 1403) décrit une étude de differents types de chromatographies appliquée a la purification d'adénovirus recombinants. Cet article décrit notamment une étude de purification d'adénovirus recombinants utilisant une chromatographie d'échange d'anions faible (DEAE). Des travaux antérieurs décrivaient déjà l'utilisation de ce type de chromatographie dans ce but (Klemperer et al., Virology 9 (1959) 536 ; Philipson L., Virology 10 (1960) 459; Haruna et al., Virology 13 (1961) 264). Las résultats présentés dans l'article de Huyghe et al. montrent une efficacité assez médiocre du protocole de chromatographie par échange d'ions préconisé. Ainsi, la résolution obtenue est moyenne, les auteurs indiquant que des particules de virus sont présentés dans plusieurs pics chromatographiques ; le rendement est faible (rendement en particules virales: 67 to; rendement en particules infectieuses : 49 Go); et la préparation virale obtenue à la suite de cette étape chromatographique est impure. En outre, un prétraitement du virus par differentes enzymes/protéines est nécessaire. Ce même article décrit par ailleurs une étude de l'utilisation de la chromatographie de perméation de gel, démontrant une très mauvaise résolution et des rendements très faibles (15-20 %). La présente invention décrit un nouveau procédé de production d'adénovirus recombinants. Le procédé selon l'invention résulte de modifications des procédés antérieurs au niveau de la phase de production et/ou au niveau de la phase de purification. Le procédé selon l'invention permet maintenant d'obtenir de manière très rapide et industrialisable, des stocks de virus en quantité et de qualité très élevées. L'un des premiers aspects de l'invention concerne plus particulierement un procédé de préparation d'adénovirus recombinants dans lequel les virus sont récoltés à partir du surnageant de culture. Un autre aspect de l'invention concerne un procédé de préparation d'adénovirus comprenant une étape d'ultrafiltration. Selon un autre aspect, l'invention concerne également un procédé de purification d'adénovirus recombinants comprenant une étape de chromatographie d'échange d'anions. La présente invention décrit également un procédé amélioré de purification utilisant une chromatographie de perméation de gel, éventuellement couplée à une chromatographie d'échange d'anions. Le procédé selon l'invention permet d'obtenir des virus de qualité élevée, en terme de pureté, de stabilité, de morphologie, et d'infectivité, avec des rendements très élevés et dans des conditions production entièrement compatibles avec les exigences industrielles et avec la réglementation concernant la production de molécules thérapeutiques. En particulier, en terme d'industrialisation, le procédé de l'invention utilise des méthodes de traitement de surnageants de cultures éprouvées à large échelle pour des protéines recombinantes, telles que la microfiltration ou filtration profondeur, et l'ultrafiltration tangentielle. Par ailleurs, du fait de la stabilité du virus à 370C, ce procédé permet une meilleure organisation au stade industriel dans la mesure où, contrairement à la méthode intracellulaire, le temps de récolte n'a pas besoin d'être précis à la demijournée près. De plus, il garantit une récolte maximum du virus, ce qui est particulierement important dans le cas des virus défectifs dans plusieurs régions. D'autre part, le procede de l'invention permet un suivi plus facile et plus précis de la cinetique de production, directement sur des échantillons homogénes de surnageant, sans pretraitement, ce qui permet une meilleure reproductibilité des productions. Le procédé selon l'invention permet aussi de s'affranchir de l'étape de lyse des oellules. La lyse des oellules presente plusieurs inconvenients. Ainsi, il peut être difficile d'envisager de casser des oellules par des cycles de congélation -décongélation au niveau industriel. Par ailleurs, les méthodes alternatives de lyse (Dounce, X-press, sonication, cisaillement mecanique, etc) presentent des inconvenients : elles sont potentiellement génératrices d'aerosols difficiles à confiner pour des virus L2 ou L3 (niveau de confinement des virus, dependant de leur pathogenicite ou de leur mode de dissemination), ces virus ayant par ailleurs tendance à être infectieux par voie arienne; elles engendrent des forces de cisaillement et/ou une liberation de chaleur difficiles a controler, et diminuant l'activite des preparation. La solution d'utiliser des détergents pour lyser les cellules demanderait à être validee et nécessiterait en outre une validation de l'élimination du detergent. Enfin, la lyse cellulaire conduit à la présence dans le milieu de nombreux débris oellulaires, qui rendent plus delicate la purification. En terme de qualité de virus, le procédé de l'invention permet potentiellement une meilleure maturation du virus conduisant à une population plus homogène. En particulier, dans la mesure où l'empaquetage de RADON viral est la dernière étape du cycle viral, la lyse prématurée des cellules libère potentiellement des particules vides qui, bien que non réplicatives, sont a priori infectieuses et à même de participer à l'effet toxique propre du virus et d'augmenter le ratio d'activité spécifique des préparations obtenues. Le ratio d'infectivité spécifique d'une préparation est defini comme le rapport du nombre total de particules virales, mesuré par des méthodes biochimiques (DO260nm, CLHP, PCR, méthodes imunemymatiques, etc) sur le nombre de particules virales génerant un effet biologique (formation de plages de lyse sur oellules en culture en milieu solide, transduction de cellules). En pratique, pour une préparation purifiée, ce ratio est déterminé en faisant le rapport de la concentration des particules mesurée par DO à 260nm sur la concentration d'unités formant plage de la préparation.Ce ratio doit etre inférieur à 100. Les résultats obtenus montrent que le procédé de l'invention permet d'obtenir un virus d'une pureté comparable à son homologue purifié par centrifugation en gradient de chlorure de césium, en une seule étape et sans traitement préalable, en partant d'un surnageant viral concentré. Un premier objet de l'invention concerne donc un procédé de production d'adénovirus recombinants caractérisé en ce que l'ADN viral est introduit dans une culture de oellules d'encapsidation et les virus produits sont récoltes après libération dans le surnageant de la culture. Contrairement aux procédés anterieurs dans lesquels les virus sont récoltés suite à une lyse cellulaire prématurée effectuée de façon mécanique ou chimique, dans le procédé de l'invention, les oellules ne sont pas lysées par l'intervention d'un facteur extérieur. La culture est poursuivie pendant une durée plus longue, et les virus sont recoltés directement dans le surnageant, apres libération spontannée par les cellules d'encapsidation. Le virus selon l'invention est ainsi recupéré dans le surnageant oellulaire, alors que dans les procédés anterieurs, il s'agit d'un virus intracellulaire, plus particulièrement intranucléaire. La demanderesse a maintenant montré que, malgré l'allongement de la durée de la culture et malgré la mise en oeuvre de volumes plus grands, le procédé selon l'invention permet de générer des particules virales en quantité élevée et de meilleure qualité. En outre, comme indiqué ci-avant, ce procédé permet d'éviter les étapes de lyse qui sont lourdes au niveau industriel et génèrent de nombreuses impuretés. Le principe du procédé repose donc sur la récolte des virus libérés dans le surnageant. Ce procédé peut impliquer un temps de culture supérieur à celui des techniques antérieures basées sur la lyse des cellules. Comme indiqué ci-avant, le temps de récolte n'a pas à être précis à la demi-journée prêt. I1 est essentiellement déterminé par la cinétique de libération des virus dans le surnageant de culture. La cinétique de libération des virus peut être suivie de différentes manières. En particulier, il est possible d'utiliser des méthodes d'analyses telles que l'HPLC phase inverse, la chromatographie analytique d'échange d'ions, la PCR semi-quantitative (exemple 4.3), la coloration des cellules mortes au bleu trypan, la mesure de la libération d'enzymes intracellulaires du type LDH, la mesure des particules dans le surnageant par des appareils de type Coulter ou par diffraction de la lumière, des méthodes immunologiques (ELISA, RIA, etc) ou nephelometriques, la titration par aggrégation en présence d'anticorps, etc. D'une manière préférée, la récolte est réalisée lorsque 50 to au moins des virus ont été libérés dans le surnageant. La temps ou 50 % des virus ont été libérés peut être aisément déterminé en réalisant une cinétique selon les méthodes décrites ci-dessus. Encore plus préferentiellement, la récolte est réalisée lorsque 70 % au moins des virus ont été libérés dans le surnageant. ll est particuliËrement préféré d'effectuer la récolte lorsque 90 % au moins des virus ont été libérés dans le surnageant, c'est-à-dire lorsque la cinetique atteint un plateau. La cinetique de libération du virus repose essentiellement sur le cycle de réplication de l'adénovirus, et peut être influencée par certains facteurs. En particulier, elle peut varier selon le type de virus utilisé, et notamment selon le type de deletion effectue dans le genome viral recombinant. En particulier, la deletion de la region E3 semble retarder la liberation du virus. Ainsi, en presence de la region E3, le virus peut etre recolte des 24-48 heures post infection. En revanche, en l'absence de la region E3, un temps de culture supérieur semble necessaire. A cet egard, la demanderesse a effectué des expérience de cinétique de libération d'un adenovirus deficient pour les regions El et E3 dans le surnageant des cellules, et montré que la libération débute 4 a 5 jours environ post-infection, et dure jusqu'au jour 14 environ. La liberation atteint generalement un plateau entre le jour 8 et le jour 14, et le titre reste stable au moins 20 jours post-infection. Préférentiellement, dans le procédé de l'invention, les cellules sont cultivées pendant une période comprise entre 2 et 14 jours. Par ailleurs, la libération du virus peut etre induite par expression dans la cellule d'encapsidation d'une proteine, par exemple virale, impliquee dans la libération du virus. Ainsi, dans le cas de l'adenovirus, la libération peut etre modulee par expression de la proteine Death codee par la region E3 de l'adenovirus (proteine E3-11,6K), eventuellement exprime sous controle d'un promoteur inductible. De ce fait, il est possible de reduire le temps de libération des virus et de recolter dans le surnageant de culture, plus de 50% des virus 24-48 heures post-infection. Pour recupérer les particules virales, le surnageant de culture est avantageusement préalablement filtré. L'adénovirus ayant une taille de 0,1pu environ (120 nm), la filtration est réalisée au moyen de membranes ayant une porosité suffisamment importante pour laisser passer le virus, mais suffisamment fine pour retenir les contaminants. De préférence, la filtration est réalisée au moyen de membranes ayant une porosite supérieure a 0,2clam. Selon un mode de mise en oeuvre particulièrement avantageux, la filtration est réalisée par filtrations successives sur des membranes de porosité décroissante. Des résultats particulièrement bons ont été obtenus en réalisant la filtration sur des filtres profondeur de porosité décroissante 10 > m, 1,0Sum puis 0,8-0,2Fm. Selon une autre variante préférée, la filtration est réalisée par microfiltration tangentielle sur membranes planes ou fibres creuses. On peut utiliser plus particulièrement des membranes planes Millipore ou des fibres creuses ayant une porosité comprise entre 0,2 et 0,6con. Les résultats présentés dans les exemples montrent que cette étape de filtration a un rendement de 100 to (aucune perte de virus n'a été observée par retention sur le filtre ayant la plus faible porosité). Selon un autre aspect de l'invention, la demanderesse a maintenant mis au point un procédé permettant de récolter et purifier le virus a partir du surnageant. A cet effet, le surnageant ainsi filtré (ou clarifié) est soumis à une ultrafiltration. Cette ultrafiltration permet (i) de concentrer le surnageant, les volumes impliqués étant important, (il) d'effectuer une première purification du virus et (iii) d'ajuster le tampon de la preparation aux etapes ulterieures de preparation. Selon un mode de réalisation préféré, le surnageant est soumis a une ultrafiltration tangentielle. L'ultrafiltration tangentielle consiste a concentrer et fractionner une solution entre deux compartiments, rétentat et filtrat, séparés par des membranes de seuils de coupure déterminés, en realisant un flux dans le compartiment retentat du dispositif et en appliquant une pression transmenbranaire entre ce compartiment et le compartiment filtrat. Le flux est generalement realise au moyen d'une pompe dans le compartiment retentat du dispositif et la pression transmenbranaire est controlée au moyen d'une vanne sur la veine liquide du circuit retentat ou d'une pompe à debit variable sur la veine liquide du circuit filtrat. La vitesse du flux et la pression transmembranaire sont choisis de fac on à generer peu de forces de cisaillement (nombre de reynolds inférieur à 5000seconde~l, preferentiellement inferieur à 3000 secondes 1,pression inferieure à 1.0 bar) tout en evitant le colmatage des membranes. Differents systemes peuvent etre utilises pour realiser l'ultrafiltration, comme par exemple des membranes spirales (Millipore, Amicon), membranes planes ou fibres creuses (Amicon, Millipore, Sartorius, Pall, GF, Sepracor). L'adénovirus ayant une masse de 1000 kDa environ, on utilise avantageusement dans le cadre de l'invention des membranes ayant un seuil de coupure inferieur a 1000 kDa, de preference compris entre 100 kDa et 1000 kDa. L'utilisation de membranes ayant un seuil de coupure de 1000 kDa ou supérieur entraine en effet une perte importante de virus à cette étape. Préférentiellement, on utilise des membranes ayant un seuil de coupure compris entre 200 et 600 kDa, encore plus préférentiellement, entre 300 et 500 kDa. Les expériences présentées dans les exemples montrent que l'emploi d'une membrane ayant un seuil de coupure à 300 kDa permet la rétention de plus de 90% des particules virales tout en éliminant des contaminants du milieu (ADN, protéines du milieu, protéines cellulaires, etc.). L'utilisation d'un seuil de coupure de 500 KDa offre les mêmes avantages. Les résultats présentés dans les exemples montrent que cette étape permet de concentrer des volumes de surnageant importants, sans perte de virus (rendement de 90%), et qu'elle génère un virus de meilleure qualité. En particulier, des facteurs de concentration de 20 à 100 fois peuvent être obtenus aisément. Cette étape d'ultrafiltration constitue ainsi une purification supplémentaire par rapport au schéma classique dans la mesure où les contaminants de masse inférieure au seuil de coupure (300 ou 500 kDa) sont éliminés au moins en partie. L'amélioration de la qualité de la préparation virale est nette lorsque l'on compare l'aspect de la séparation après la première étape d'ultracentrifugation selon les deux procédés. Dans le procédé classique impliquant une lyse, le tube de la préparation virale présente un aspect trouble avec un coagulum (lipides, protéines) venant parfois toucher la bande de virus, alors que dans le procédé de l'invention, la préparation après libération et ultrafiltration présente une bande déjà bien résolue des contaminants du milieu qui persistent dans la phase supérieure. L'amelioration de la qualité est aussi demontrée lorsque l'on compare les profils sur chromatographie d'échange d'ion d'un virus obtenu par lyse cellulaire par rapport au virus obtenu par ultrafiltration comme decrit dans la présente invention. Par ailleurs, il est possible d'améliorer encore la qualite en poursuivant l'ultrafiltration par une diafiltration du concentrat. Cette diafiltration est realisee sur le même principe que l'ultrafiltration tangentielle, et permet d'eliminer plus completement les contaminants de taille superieure au seuil de coupure de la membrane, tout en realisant l'equilibration du concentrat dans le tampon de purification. Par ailleurs, la demanderesse a également montré que cette ultrafiltration permettait ensuite de purifier le virus directement par chromatographie sur colonne échangeuse d'ions ou par chromatographie de perméation de gel, permettant d'obtenir une excellente résolution du pic de particules virales sans avoir besoin de traitement de la préparation préalable à la chromatographie. Ceci est particulièrement inattendu et avantageux. En effet, comme indiqué dans l'article de Hyughe et al. précité, la purification par chromatographie de préparations virales donne des résultats médiocres et nécessite de plus un prétraitement de la suspension virale par de la benzonase et des cyclodextriites. Plus particulièrement, le procédé selon Invention est donc caractensé en ce que les virus sont récoltes par ultrafiltration. Comme indiqué ci-avant, le concentrat résultant est utilisable directement pour une purification du virus. Cette purification peut être réalisée par les techniques classiques antérieures, telles que la centrifugation en gradient de chlorure de césium ou autre milieu d'ultracentrifugation permettant de separer les particules selon leur taille, densité ou coefficient de sedimentation. Les résultats présentés dans l'exemple 4 montrent en effet que le virus ainsi obtenu présente des caractéristiques remarquables. En particulier, selon l'invention, il est possible de remplacer le chlorure de cesium par une solution de iodixanol,5 ,5 '-! (2-hydroxy- 1 -3propanediyl) -bis (aoetylamino)] bis [N,N '-bis (2,3dihydroxypropyl-2,4,6-triodo- i, 3-benzenecarboxamide] dans laquelle le virus sedimente à l'equilibre à une densité relative comprise entre 1,16 et 1,24. L'utilisation de cette solution est avantageuse car, contrairement au chlorure de cesium, elle n'est pas toxique. Par ailleurs, la demanderesse a également montré que, de manière avantageuse, le concentrat obtenu permettait aussi de purifier le virus directement par un mécanisme d'échangeuse d'ions ou par perméation de gel, et d'obtenir une excellente résolution du pic chromatographique de particules virales, sans avoir besoin de prétraitement. D chromatographique, il est préférable dans le cadre de l'invention d'utiliser de supports sous forme de billes, ayant les caractéristiques suivantes: - le plus sphérique possible, - de diamètre calibré (billes toutes identiques ou le plus homogènes possible), sans imperfections ni cassures, - de diamètre le plus petit possible: des billes de 10 Fm ont été décrites (MonoE!.eads de Pharmacia ou TSK-gel de TosoHaas, par exemple). Cette valeur semble constituer la limite inférieure pour le diamètre de billes dont la porosité doit par ailleurs être très élevée pour permettre la pénétration des objets à chromatographier à l'intérieur des billes (voir ci-dessous). - tout en restant rigides pour résister à la pression. Par ailleurs, pour chromatographier les adénovirus qui constituent des objets de taille très importante (diamètre > 100 nm), il est important de mettre en oeuvre des gels de porosité élevée, voire la plus élevée possible, pour permettre l'accès des particules virales aux groupements fonctionnels avec lesquels elles sont appelées à interagir. Avantageusement, le support est choisi parmi l'agarose, le dextran, l'acrylamide, la silice, le poly[styrène-divinylbenzène], le copolymère éthylène glycolméthacrylate, seuls ou en mélange. Pour la chromatographie d'échange d'anions, le support utilisé doit être fonctionalisé, par greffage d'un groupement susceptible d'interagir avec une molécule anionique. Le plus généralement, le groupement est constitué d'une amine qui peut être ternaire ou quaternaire. En utilisant une amine ternaire, telle que le DEAE par exemple, on obtient un échangeur d'anions faible. En utilisant une amine quaternaire, on obtient un échangeur d'anions fort. Dans la cadre de la présente invention, il est particulièrement avantageux d'utiliser un échangeur d'anions fort. Ainsi, on utilise préférentiellement selon l'invention un support de chromatographie tel qu'indiqué ci-dessus, fonctionnalisé par des amines quaternaires. Parmi les supports fonctionnalisés par des amines quaternaires, on peut citer comme exemples les gels Source Q, Mono Q, Q Sepharose, Poros HQ et Poros QE, les gels de type Fractogel 'IMAGE, et les gels Toyopearl Super Q. Des exemples préférés de gels utilisables dans le cadre de l'invention sont le gel Source, notamment Source Q, tel que 15 Q (Pharmacia), les MonoBeads, tel que Q (Pharmacia), les gels de type Poros HQ et Poros QE. Le support MonoBeads (diamètre des billes 10 + 0,5 ,um) est disponible commercialement depuis plus de 10 ans et les gels de type Source (15 clam) ou Poros (10 ,um ou 20 Clam) depuis 5 ans environ. Ces deux derniers supports présentent l'avantage d'avoir des pores internes très larges (ils vont de 20 nm à 1 pin), permettant ainsi le passage de très gros objets à travers les billes. De plus ils offrent très peu de résistance à la circulation de liquide à travers le gel (donc très peu de pression) et sont très rigides. Le transport des solutés vers les groupements fonctionnels avec lesquels ils vont entrer en interaction est donc très rapide. La demanderesse a montré que ces paramètres sont particulièrement importants dans le cas de l'adénovirus, dont la diffusion est lente en raison de sa taille. Les résultats présentés dans les exemples montrent que l'adénovirus peut être purifié à partir du concentrat en une seule étape de chromatographie d'échange d'anions, que le rendement de la purification est excellent (140tu en terme de tdu, comparé à la valeur de 49% rapportée par Huyghes et al.) et que la résolution est excellente. En outre, les résultats présentés montrent que l'adénovirus obtenu présente une infectivité élevée, et possède donc les caractéristiques requises pour une utilisation thérapeutique. Des résultats particulièrement avantageux ont été obtenus avec un échangeur d'anions fort, c'est-a-dire fonctionnalisé par des amines quaternaires (exemple : le gel Source Q). A cet égard, un autre objet de l'invention concerne un procédé de purification d'adénovirus recombinants à partir d'un milieu biologique caractérisé en ce qu'il comprend une étape de purification par chromatographie d'echange d'anions fort. Selon cette variante, le milieu biologique peut être un surnageant de cellules d'encapsidation productrices dudit virus, un lysat de oellules d'encapsidation productrices dudit virus, ou une solution prépurifiée dudit virus. Préférentiellement, la chromatographie est effectuée sur un support fonctionnalisé avec une amine quaternaire. Toujours selon un mode préféré, le support est choisi parmi l'agarose, le dextran, l'acrylamide, la silice, le poly[styrène- divinylbezêhe], le copolymère éthylène glycol-méthacrylate, seul ou en mélange. Un mode de réalisation particulièrement avantageux est caractérisé en ce que la chromatographie est effectuée sur un gel Source Q. Par ailleurs, le procédé décrit ci-dessus est avantageusement réalisé à partir d'un surnageant de cellules productrices, et comprend une étape préalable d'ultrafiltration. Cette étape est avantageusement réalisée dans les conditions définies ci-avant, et notamment, il s'agit d'une ultrafiltration tangentielle sur membrane ayant un seuil de coupure compris entre 300 et 500 kDa. Selon un autre mode de réalisation du procédé de l'invention, les virus sont récoltes et purifiés par chromatographie de perméation de gel. La perméation de gel peut être réalisée directement sur le surnageant, sur le concentrat, ou sur le virus issu de la chromatographie d'échange d'anions. Les supports mentionnés pour la chromatographie d'échange d'anions peuvent être utilisés dans cette étape, mais sans fonctionnalisation. A cet égard, les supports préférés sont l'agarose (gels Sepharose), le dextran (gels Sephadex), l'acrylamide (gels Sephacryl, gels Trisacryl), la silice (gels TSK-gel SW), le copolymère éthylene glycol-méthacrylate (gels Toyopearl HW et TSK-gel PW), ou des mélanges (agarose-dextran: gel Superdex). Des supports particulierement préférés sont: - le Superdex 200HR (Pharmacia) - le Sephacryl S-500HR, S-1000HR ou S-2000 (Pharmacia) - le TSK G6000 PW (TosoHaas). Un procédé préféré selon l'invention comprend donc une ultrafiltration suivie d'une chromatographie d'échange d'anions. Un autre procédé préféré comprend une ultrafiltration suivie d'une chromatographie d'échange d'anions, suivie d'une chromatographie de perméation de gel. Une autre variante de l'invention concerne un procede de purification d'adenovirus a partir d'un milieu biologique comprenant une premiere etape d'ultracentrifugation, une deuxieme etape de dilution ou dialyse, et une troisieme etape de chromatographie d'echange d'anions. Preferentiellement, selon cette variante, la premiere etape est realisee par ultracentrifugation rapide sur gradient de chlorure de cesium. Le terme rapide signifie une ultracentrifugation allant de 0,5 a 4 heures environ. Au cours de la deuxieme etape, le virus est dilue ou dialyse contre du tampon, pour faciliter son injection sur le gel de chromatographie, et l'elimination du milieu d'ultracentrifugation. La troisieme etape est realisee en utilisant une chromatographie d'echange d'anions telle que decrite ci-avant, de preference d'anions forts. Dans une expérience typique, a partir du virus récolté dans le surnageant (ou éventuellement intracellulaire), une 1ère ultracentrifugation rapide est effectuee avec chlorure de césium (comme dans l'exemple 3). Ensuite, après une simple dilution de l'échantillon (par exemple par 10 volumes de tampon) ou après une simple dialyse dans du tampon, l'échantillon est chromatographié en échange d'ions (comme dans l'exemple 5.1.). L'avantage de cette variante du procede de l'invention, provient du fait qu'elle met en oeuvre 2 modes totalement différents de séparation du virus (densité et charge de surface), amenant le virus à un niveau de qualité combinant les performances des 2 méthodes. En outre, l'etape de chromatographie permet simultanement d'eliminer le milieu utilise pour l'ultracentrifugation (chlorure de césium par exemple, ou tout autre milieu equivalent cite plus haut). Un autre objet de l'invention concerne l'utilisation de iodixanol,5,5'-[(2- hydroxy-1-3propanediyl)-bis(acetylamino)]bis[N,N'-bis(2,3dihydroxypropyl-2,4,6- triodo-1,3-benzenecarboxamide] pour la purification d'adenovirus. Pour la mise en oeuvre du procédé de l'invention, differentes cellules d'encapsidation des adénovirus peuvent etre utilisées. En particulier, les oellules d'encapsidation peuvent être préparées à partir de différentes cellules pharmaceutiquement utilisables, c'est-à-dire cultivables dans des conditions industriellement acceptables et n'ayant pas de caractère pathogène reconnu. Il peut s'agir de lignées cellulaires établies ou de cultures primaires et notamment de rétinoblastes humains, de cellules de carcinome de poumon humain, ou de cellules embryonnaires de rein. Il s'agit avantageusement de cellules d'origine humaine, infectables par un adénovirus. A cet égard, on peut citer les cellules KB, Hela, 293, Vero, gmDBP6, HER, A549, HER, etc. Les cellules de la lignée KB sont issues d'un carcinome épidermique humain. Elles sont accessibles à l'ATCC (ref. CCL 17) ainsi que les conditions permettant leur culture. La lignée de cellules humaines Hela est issue d'un carcinome de l'épithelium humain. Elle est également accessible à l'ATCC (ref. CCL2) ainsi que les conditions permettant sa culture. Les cellules de la lignée 293 sont des cellules de rein embryonnaire humain (Graham et al., J. Gen. Virol. 36 (1977) 59). Cette lignée contient notamment, intégrée dans son génome, la partie gauche du génome de l'adénovirus humain Ad5 (12 %). La lignée de cellules gm DBP6 (Brough et al., Virology 190 (1992) 624) est constituée de cellules Hela portant le gène E2 d'adénovirus sous le controle du LTR de MMTV. Il peut s'agir également de cellules d'origine canine (BHK, MDCK, etc). A cet égard, les cellules de la lignée canines MDCK sont préférées. Les conditions de culture des cellules MDCK ont été décrites notamment par Macatney et al., Science 44 (1988) 9. Differentes lignées de cellules d'encapsidation ont été décrites dans la litterature et sont mentionnées dans les exemples. il s'agit avantageusement de cellules transcomplémentant la fonction El de l'adénovirus. Encore plus préférentiellement, il s'agit de cellules trans-complémentant les fonctions El et E4 ou El et E2a de l'adénovirus. Ces cellules sont préférentiellement derivées de cellules embryonnaires humaines de rein ou de la rétine, ou de carcinomes humains de poumon. L'invention fournit ainsi un procédé de production d'adénovirus recombinants particulièrement avantageux. Ce procédé est adapté à la production de virus recombinants défectifs pour une ou plusieurs régions, et en particulier, de virus défectifs pour la région El, ou pour les régions El et E4. Par ailleurs, il est applicable à la production d'adénovirus de sérotypes differents, tels qu'indiqués ci-avant. Selon un mode particulièrement avantageux, le procédé de l'invention est utilisé pour la production d'adénovirus recombinants dans lesquels la région El est inactivée par délétion d'un fragment PvuII-BglII allant du nucléotide 454 au nucléotide 3328, sur la séquence de l'adénoviuis Ad5. Cette séquence est accessible dans la littérature et également sur base de données (voir notamment Genebank nO M73260). Dans un autre mode de réalisation préféré, la région El est inactivée par délétion d'un fragment HinfII-Sau3A allant du nucléotide 382 au nucléotide 3446. Dans un mode particulier, le procédé permet la production de vecteurs comprenant une délétion de la totalité de la région M. Ceci peut être réalisé par excision d'un fragment Maell-MscI correspondant aux nucléotides 35835-32720. Dans un autre mode particulier, seule une partie fonctionnelle de E4 est délétée. Cette partie comprend au moins les phases ORF3 et ORF6. A titre d'exemple, ces phases codantes peuvent être délétées du génome sous forme de fragments Pvu"l-Alul et BglII-PvuII respectivement, correspondant aux nucléotides 34801-34329 et 34115-33126 respectivement. Les délétions de la région M du virus Ad2 dl808 ou des virus Ad5 dli 004, Ad5 dli 007, Ad5 elle11 ou Ad5 dli 014 peuvent également être utilisées dans le cadre de l'invention. A cet égard, les oellules de l'invention sont particulièrement avantageuses pour la production de virus comprenant une région El inactive et une délétion dans la région E4 du type de celle présente dans le génome de Ad5 dli 014, c'est-à-dire de virus E4- conservant la phase de lecture ORF4. Comme indiqué ci-avant, la délétion dans la région El couvre avantageusement tout ou partie des régions E1A et E1B. Cette délétion doit être suffisante pour rendre le virus incapable de réplication autonome dans une oellule. La partie de la région El délétée dans les adénovirus selon l'invention couvre avantageusement les nucléotides 454-3328 ou 382-3446. Les positions données ci-dessus font référence à la séquence de l'adénovirus Ad5 sauvage telle que publiée et accessible sur base de donnée. Bien que des variations mineures puissent exister entre les différents sérotypes d'adénovirus, ces positions sont généralement applicables à la construction d'adénovirus recombinants selon l'invention à partir de tout sérotype, et notamment des adénovirus Ad2 et Ad7. Par ailleurs, les adénovirus produits peuvent posséder d'autres altérations au niveau de leur génome. En particulier, d'autres régions peuvent être délétées pour augmenter la capacité du virus et réduire ses effets secondaires liés à l'expression de genes viraux. Ainsi, tout ou partie de la région E3 ou IVa2 notamment peut être délétée. Concernant la région E3, il peut cependant être particulièrement avantageux de conserver la partie codant pour la protéine gpl9K. Cette protéine permet en effet d'éviter que le vecteur adénoviral fasse l'objet d'une réaction immunitaire qui (i) limiterait son action et (ii) pourrait avoir des effets secondaires indésirables. Selon un mode particulier, la région E3 est délétée et la séquence codant pour la protéine gpl9k est réintroduite sous controle d'un promoteur hétérologue. Comme indiqué avant, les adénovirus constituent des vecteurs de transfert de gènes très efficaces pour des applications de thérapie génique et oellulaire. Pour cela, une séquence d'acides nucléiques hétérologue dont le transfert et/ou l'expression dans une cellule, un organe ou un organisme est recherché peut être insérée dans leur génome. Cette séquence peut comporter un ou plusieurs gènes thérapeutiques, tels qu'un gène dont la transcription et éventuellement la traduction dans la cellule cible génèrent des produits ayant un effet thérapeutique. Parmi les produits thérapeutiques, on peut citer plus particulièrement les enzymes, les dérivés sanguins, les hormones, les lymphokines : interleukines, interférons, TNF, etc (FR 9203120), les facteurs de croissance, les neurotransmetteurs ou leurs précurseurs ou enzymes de synthèse, les facteurs trophiques: BDNF, CNTF, NGF, IGF, GMF, aFGF, bFGF, NT3, NT5, etc; les apolipoprotéines: ApoAI, ApoAIV, ApoE, etc (W094/25073), la dystrophine ou une minidystrophine (W093/06223), les gènes suppresseurs de tumeurs : p53, Rb, RaplA, DCC, k-rev, etc (W094/24297), les gènes codant pour des facteurs impliqués dans la coagulation: Facteurs VII, VIII, IX, etc, les gènes suicides: Ihymidine kinase, cytosine désaminase, etc; ou encore tout ou partie d'une immunoglobuline naturelle ou artificielle (Fab, ScFv, etc, W094/29446), etc. Le gène thérapeutique peut également être un gène ou une séquence antisens, dont l'expression dans la cellule cible permet de contrôler l'expression de gènes ou la transcription d'ARNm oellulaires. De telles séquences peuvent par exemple être transcrites, dans la cellule cible, en ARN complémentaires d'ARNm cellulaires et bloquer ainsi leur traduction en protéine, selon la technique décrite dans le brevet EP 140 308. Le gène thérapeutique peut peut aussi être un gène codant pour un peptide antigénique, capable de générer chez l'homme une réponse immunitaire, en vue de la réalisation de vaccins. ll peut s'agir notamment de peptides antigéniques spécifiques du virus d'epstein barr, du virus HIV, du virus de l'hépatite B (EP 185 573), du virus de la pseudo-rage, ou encore spécifiques de tumeurs (EP 259 212). Généralement, la séquence d'acides nucléiques hétérologue comprend également une région promotrice de la transcription fonctionnelle dans la cellule infectée, ainsi qu'une région située en 3' du gène d'intérêt, et qui spécifie un signal de fin transcriptionnelle et un site de polyadénylation. L'ensemble de ces éléments constitue la cassette d'expression. Concernant la région promotrice, il peut s'agir d'une région promotrice naturellement responsable de l'expression du gène considéré lorsque celle-ci est susceptible de fonctionner dans la oellule infectée. ll peut également s'agir de régions d'origine différente (responsables de l'expression d'autres protéines, ou même synthétiques). Notamment, il peut s'agir de séquences promotrices de gènes eucaryotes ou viraux ou de toute séquence promotrice ou dérivée, stimulant ou réprimant la transcription d'un gène de façon spécifique ou non et de façon inductible ou non. A titre d'exemple, il peut s'agir de séquences promotrices issues du génome de la cellule que l'on désire infecter, ou du génome d'un virus, et notamment, les promoteurs des gènes E1A, MLP d'adénovirus, le promoteur CMV, LTR-RSV, etc. Panni les promoteurs eucaryotes, on peut citer également les promoteurs ubiquitaires (HPRT, vimentine, a-actine, tubuline, etc), les promoteurs des filaments intermédiaires (desmine, neurofilaments, kératine, GFAP, etc) les promoteurs de gènes thérapeutiques (type MDR, CFTR, facteur VIII, etc) les promoteurs spécifiques de tissus (pyruvate kinase, villine, promoteur de la protéine intestinale de liaison des acides gras, promoteur de l'actinie a des cellules du muscle lisse, promoteurs spécifiques pour le foie ; Apo Al, Apo MI, Albumine humaine etc) ou encore les promoteurs répondant à un stimulus (récepteur des hormones stéroides, récepteur de l'acide rétinoique, etc,). En outre, ces séquences d'expression peuvent être modifiées par addition de séquences d'activation, de régulation, ou permettant une expression tissu-spécifique ou majoritaire. Par ailleurs, lorsque l'acide nucléique inséré ne comporte pas de séquences d'expression, il peut être inséré dans le génome du virus défectif en aval d'une telle séquence. Par ailleurs, la séquence d'acides nucléiques hétérologue peut également comporter, en particulier en amont du gène thérapeutique, une séquence signal dirigeant le produit thérapeutique synthétisé dans les voies de sécrétion de la cellule cible. Cette séquence signal peut être la séquence signal naturelle du produit thérapeutique, mais il peut également s'agir de toute autre séquence signal fonctionnelle, ou d'une séquence signal artificielle. La cassette d'expression du gène thérapeutique peut être insérée en différents sites du génome de l'adénovirus recombinant, selon les techniques décrites dans l'art antérieur. Elle peut tout d'abord être insérée au niveau de la délétion El. Elle peut également être insérée au niveau de la région E3, en addition ou en substitution de séquences. Elle peut également être localisée au niveau de la région E4 délétée. La présente invention concerne également les préparations virales purifiées obtenues selon le procédé de l'invention, ainsi que toute composition pharmaceutique comprenant un ou plusieurs adénovirus recombinants défectifs préparés selon ce procédé. Les compositions pharmaceutiques de Invention peuvent être formulées en vue d'une administration par voie topique, orale, parentérale, intranasale, intraveineuse, intramusculaire, sous-cutanée, intraoculaire, transdermique, etc. Préférentiellement, la composition pharmaceutique contient des véhicules pharmaceutiquement acceptables pour une formulation injectable. ll peut s'agir en particulier de solutions salines (phosphate monosodique, disodique, chlorure de sodium, potassium, calcium ou magnésium, etc, ou des mélanges de tels sels), stériles, isotoniques, ou de compositions sèches, notamment lyophilisées, qui, par addition selon le cas d'eau stérilisée ou de sérum physiologique, permettent la constitution de solutés injectables. D'autres excipients peuvent être utilisés tels que par exemple un hydrogel. Cet hydrogel peut être préparé à partir de tout polymère (homo ou hétéro) biocompatible et non cytotoxique. De tels polymères ont par exemple été décrits dans la demande W093/08845. Certains d'entre eux, comme notamment ceux obtenus à partir d'oxyde d'éthylène et/ou de propylène sont commerciaux. Las doses de virus utilisées pour l'injection peuvent être adaptées en fonction de différents paramètres, et notamment en fonction du mode d'administration utilisé, de la pathologie concernée, du gène à exprimer, ou encore de la durée du traitement recherchée. D'une manière générale, les adénovirus recombinants selon l'invention sont formulés et administrés sous forme de doses comprises entre 104 et 1014 pfu, et de préférence 106 à 1010 pfu. Le terme pfu ("plaque forming unit") correspond au pouvoir infectieux d'une solution d'adénovirus, et est déterminé par infection d'une culture cellulaire appropriée, et mesure, généralement après 15 jours, du nombre de plages de cellules infectées. Les techniques de détermination du titre pfu d'une solution virale sont bien documentées dans la littérature. Selon le gène thérapeutique, les virus ainsi produits peuvent être utilisés pour le traitement ou la prévention de nombreuses pathologies, incluant les maladies génétiques (dystrophie, fibrose cystique, etc), les maladies neurodégénératives (Alzheimer, Parkinson, ALS, etc), les cancers, les pathologies liées aux désordres de la coagulation ou aux dyslipoprotéinémies, les pathologies liées aux infections virales (hépatites, SIDA, etc), etc. La présente invention sera plus complètement décrite à l'aide des exemples qui suivent, qui doivent être considérés comme illustratifs et non limitatifs. Légende des figures Figure 1: Etude de la stabilite de l'adenovirus purifie selon l'exemple 4. Figure 2 : Analyse en CLHP phase inverse de l'adenovirus purifie selon l'exemple 4. Comparaison avec l'adenovirus de l'exemple 3. Figure 3 : Cinetique de liberation de l'adenovirus Ad-ssGal dans le surnageant de cellules 293, mesuree par PCR semi-quantitative et Plaque Assay. Figure 4 : Profil d'elution sur Source Q15 d'un surnageant d'adenovirus ultrafiltre (exemple 5.1). Figure 5 : Analyse en CLHP Ressource Q du pic de virus recolte par chromatographie sur gel Source Q15 d'un surnageant d'adenovirus ultrafiltre (exemple 5.1). Figure 6 : (A) Profil d'elution sur gel Source Q15 d'un surnageant d'adenovirus Ad-APOA1 ultrafiltre (exemple 5.3); et (B) Analyse en CLHP Ressource Q du pic de virus recolte. Figure 7: (A) Profil d'elution sur Source Q15 d'un surnageant d'adenovirus Ad-TK ultrafiltre (exemple 5.3). Analyse en CLHP Ressource Q des differentes fractions (debut et fin de pic) de virus recoltees: (B) Fraction F2, milieu du pic; (C) Fraction F3, borne du pic; (D) Fraction F4, fin du pic. Figure 8 : Profil d'elution sur gel Mono Q d'un surnageant concentre de culture de cellules productrices d'adenovirus (exemple 5.4). BG25F1: Virus surnageant concentre et purifie sur cesium. BG25C : Surnageant infecte, concentre. Figure 9 : Profil d'elution sur gel POROS d'un surnageant concentre de culture de oellules productrices d'adenovirus (exemple 5.4). BG25F1: Virus surnageant concentre et purifie sur cesium. BG25C : Surnageant infecte, concentre. Figure 10 : Profil de purification par permeation de gel sur S-1000HR/S-200 d'un surnageant d'adenovirus ultrafiltre (exemple 6). Techniques générales de biologie moléculaire Les méthodes classiquement utilisées en biologie moléculaire telles que les extractions préparatives d'ADN plasmidique, la centrifugation d'ADN plasmidique en gradient de chlorure de césium, l'électrophorèse sur gels d'agarose ou d'acrylamide, la purification de fragments d'ADN par électroélution, les extraction de protéines au phénol ou au phénol-chloroforme, la précipitation d'ADN en milieu salin par de méthanol ou de risopropanol, la transformation dans Escherichia coli, etc ... sont bien connues de l'homme de métier et sont abondamment décrites dans la littérature [Maniatis T. et al., "Molecular Cloning, a Laboratory Manual", Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, N.Y., 1982; Ausubel F.M. et al. (eds), "Current Protocols in Molecular Biology", John Wiley & Sons, New York, 1987]. Les plasmides de type pBR322, pUC et les phages de la série M13 sont d'origine commerciale (Bethesda Research Laboratories). Pour les ligatures, les fragments d'ADN peuvent être séparés selon leur taille par électrophorèse en gels d'agarose ou d'acrylamide, extraits au phénol ou par un mélange phénoUchloroforme, précipités à l'méthanol puis incubés en présence de l'ADN ligase du phage T4 (Biolabs) selon les recommandations du fournisseur. Le remplissage des extrémités 5' proéminents peut être effectué par le fragment de Klenow de 1'ADN Polymérase I d'E. coli (Biolabs) selon les spécifications du fournisseur. La destruction des extrémités 3' proéminentes est effectuée en présence de l'ADN Polymérase du phage T4 (Biolabs) utilisée selon les recommandations du fabricant. La destruction des extrémités 5' proéminentes est effectuée par un traitement ménagé par la nucléase S1. La mutagénèse dirigée in vitro par oligodéoxynucléotides synthétiques peut être effectuée selon la méthode développée par Taylor et al. [Nucleic Acids Res. Ji (1985) 8749-8764] en utilisant le kit distribué par Amersham. L'amplification enzymatique de fragments d'ADN par la technique dite de PCR LPolymerase-catalyzed Çhain Reaction, Saiki R.K. et al., Science 23Q (1985) 1350-1354; Mullis K.B. et Faloona F.A., Meth. Enzym. 155 (1987) 335-350] peut être effectuée en utilisant un "DNA thermal cycler" (Perkin Elmer Cetus) selon les spécifications du fabricant. La vérification des séquences nucléotidiques peut être effectuée par la méthode développée par Sanger et al. [Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 74 (i977) 5463-5467] en utilisant le kit distribué par Amersham. Exemol Exemple l: Iignees cellulaires d'encapsidation Les cellules d'encapsidation utilisées dans le cadre de l'invention peuvent provenir de toute lignée cellulaire infectable par un adénovirus, compatible avec une utilisation à des fins therapeutiques. n s'agit plus préférentiellement d'une cellule choisie parmi les lignées suivantes: - Les cellules de la lignée 293: La lignée 293 est une lignée de cellules embryonnaires de rein humaines contenant l'extrémité gauche (environ 11-12to) du génome de ladénovirus sérotype 5 (Ad5), comprenant L'TIR gauche, la région d'encapsidation, la région El, incluant Ela, Eîb, la région codant pour la protéine pIX et une partie de la région codant pour la protéine pIVa2 (Graham et al., J. Gen. Virol. 36 (1977) 59). Cette lignée est capable de trans-complémenter des adénovirus recombinants défectifs pour la région El, c'està-dire dépourvus de tout ou partie de la région El, et de produire des stocks viraux ayant des titres élevés - Les cellules de la lignee A549 Des cellules complémentant la région El de radénovirus ont été construites à partir des cellules A549 (Imler et al., Gene Ther. (1996) 75). Ces cellules contiennent un fragment restreint de la région El, dépourvue de 1'1TR gauche, placée sous le controle d'un promoteur inductible. - Les cellules de la lignée HER La cellules embryonnaires de la rétine humaine (HER) peuvent etre infectées par un adénovirus (Byrd et al., Oncogene 2 (1988) 477). Des cellules d'encapsidation d'adénovirus preparées à partir de ces cellules ont été décrites par exemple dans la demande W094/28152 ou dans l'article de Fallaux et al. (Hum.Gene Ther. (1996) 215). On peut citer plus particulierement la lignée 911 comprenant la région El du génome de l'adénovirus Ad5, du nucléotide 79 au nucléotide 5789 intégrée dans le génome de cellules HER. Cette lignée de cellules permet la production de virus défectifs pour la région El. - Les cellules IGRP2 Les cellules IGRP2 sont des oellules obtenues a partir de cellules 293, par intégration d'une unité fonctionnelle de la région E4 sous contrôle d'un promoteur inductible. Ces cellules permettent la production de virus défectifs pour les régions El et E4 (Yeh et al., J. Virol (1996) 70). - Les cellules VK Les cellules VK (VK2-20 et VK10-9) sont des cellules obtenues a partir de cellules 293, par intégration de l'intégralite de la région E4 sous contrôle d'un promoteur inductible, et de la région codant pour la protéine pIX. Ces cellules permettent la production de virus défectifs pour les régions El et E4 (Krougliak et al., Hum. Gene Ther. 6 (1995) 1575). - Les cellules 293E4 Les cellules 293E4 sont des cellules obtenues a partir de cellules 293, par intégration de l'intégralité de la région E4. Ces cellules permettent la production de virus défectifs pour les régions El et E4 (WO95/02697; Cancer Gene Ther. (1995) 322). Exemple 2: Virus utilises Les virus produits dans le cadre des exemples qui suivent sont un adenovirus contenant le gene marqueur LacZ de E.coli (Ad-ssGal) un adenovirus contenant le gene codant pour la thymidine kinase du virus de l'herpes type I (Ad-TK) et un virus codant pour l'apolipoproteine Al (Ad-apoAI). Ces virus sont dérivés du serotype Ad5 et possedent la structure suivante: - Une deletion dans la region El recouvrant par exemple les nucleotides 382 (site HinfI) à 3446 (site Sau3a). - Une cassette d'expression du gene, sous controle du promoteur RSV, inserée au niveau de ladite deletion. - Une deletion de la region E3. La construction de ces virus a ete decrite dans la litterature (W094/25073, W095/14102, FR 95.01632, Stratford-Perricaudet et al. J. Clin. Invest (1992) p626). ll est entendu que toute autre construction peut etre produite selon le procede de rinvention, et notamment des virus portant d'autres genes heterologues et/ou d'autres deletions (E1/E4 ou E1/E2 par exemple). Exemple 3 : Production de virus par Ivse des cellules Cet exemple reproduit la technique anterieure de production de virus, consistant a lyser les cellules d'encapsidation pour recuperer les virus produits. Les oellules 293 sont infectées à 80-90to de confluence en boite de culture avec un préstock de virus Ad-bGal ou Ad-TK (exemple 2) à raison de 3 à 5 virus par cellule (Multiplicity of Infection MOI = 3 à 5). L'incubation dure de 40 à 72 heures, le timing de récolte etant jugé par l'observation au microscope des cellules qui s'arrondissent, deviennent plus réfringentes et adherent de plus en plus faiblement au support de culture. Dans la litterature la cinetique du cycle viral dure de 24 à 36 heures. Au niveau d'une production de labo il est important de récolter les cellules avant qu'elles ne se détachent afin d'eliminer le milieu d'infection au moment de la récolte sans perdre de cellules puis de les reprendre dans un volume minimum (le facteur de concentration est selon la taille de la culture de l'ordre de 10 à 100 fois). Le virus est alors libéré du noyau par 3 à 6 cycles de décongélation suocessifs (ethanol carboglace à -700C, bain-marie à 370C) Le lysat cellulaire obtenu est ensuite centrifugé a basse vitesse (2000 à 4000 rpm) et le surnageant (lysat oellulaire clarifié) est ensuite purifié par ultracentrifugation en gradient de chlorure de cesium en deux étapes: - Une premiére ultracentrifugation (step) rapide de 1,5 heure 35000 rpm rotor sw 41, sur deux couches de césium 1.25 et 1.40 encadrant la densité du virus (1.34) de facon a separer le virus des proteines du milieu; les rotors peuvent etre des rotors 'swinging'(Sw28,Sw41Beckman ) ou angle fixe (Ti 45, Ti 70,Ti 70.1 Beckman) selon les volumes à traiter; - Une deuxiéme ultracentrifugation en gradient plus longue (de 10 à 40 heures selon le rotor utilisé), par exemple 18 heures à 35000 rpm en rotor sw 41 qui constitue la veritable et unique purification du virus. Le virus se retrouve dans un gradient linéaire a l'equilibre à une densité de 1.34. Generalement, a cette etape, la bande du virus est majoritaire. On observe néanmoins parfois deux bandes moins denses, fines dont l'observation en microscopie electronique a montré qu'il s'agissait de virus vides ou cassés et pour la bande la moins dense de sous unités virales (pentons ,hexons). Aprés cette etapes le virus est récolté dans le tube par ponction a l'aiguille et le cesium est éliminé par dialyse ou dessalage sur G25. Exemple 4: Production de virus dans le surnageant Cet exemple decrit une expérience de production de virus par recuperation apres libération spontannee. Le virus est ensuite recolte par ultrafiltration, puis purifie par chlorure de cesium. 4.1. Protocole Dans cette méthode, contrairement a l'exemple 3, les cellules ne sont pas récoltées 40 à 72 heures post-infection, mais l'incubation est prolongee entre 8 à 12 jours de facon a obtenir une lyse totale des cellules sans avoir besoin de proceder aux cycles de congélations décongélations. Le virus se retrouve dans le surnageant. Le surnageant est alors clarifié par filtration sur des filtres profondeur de porosité décroissante (1 (4wvi . 00. 8-0.2pin). La virus a une taille de 0.1 pm et à cette étape nous n'avons observé aucune perte de virus par rétention sur le filtre a la plus faible porosité( 0.22 Cun) Le surnageant une fois clarifié est ensuite concentré par ultrafiltration tangentielle sur membrane spirale Millipere ayant un seuil de coupure de 300 kDa. Dans les experiences rapportees dans la presente invention, le facteur de concentration est dicté par le volume mort du systeme qui est de 100 ml. Des volumes de surnageant de 4 à 20 litres ont ete concentrés avec ce systeme, permettant d'obtenir des volumes de concentrat de 100 ml à 200 mu sans difficultes, ce qui correspond a un facteur de concentration de 20 à 100 fois. Le concentrat est ensuite filtré sur 0.22 ,um puis purifié par centrifugation sur chlorure de cesium comme decrit dans l'exemple 3, suivi d'une étape de dialyse. 4.2. Resultats Pureté Alors que le tube de virus intracellulaire (exemple 3) presente un aspect trouble avec un coagulum (lipides, protemes) venant parfois toucher la bande de virus, la preparation virale obtenue apres la premiere etape de centrifugation sur chlorure de cesium par le procede de l'invention presente une bande de virus déjà bien isolée des contaminants du milieu qui persistent dans la phase supérieure. L'analyse en chromatographie liquide haute performance sur colonne Ressource Q (cf exemple 5) montre aussi ce gain en pureté du materiel de départ obtenu par ultrafiltration de surnageant infecté avec une diminution des contaminants acides nucleiques (ratio DO 260/280 superieur ou egal à 1,8) et proteiques (ratio DO 260/280 inférieur à 1) Stabilité du virus dans un surnageant à 37 C: La stabilite du virus a ete determinée par titration par la methode de plaque assay d'un surnageant de culture infectieux dont des aliquots ont été prelevées à differents temps d'incubation à 37"C post -infection. Les resultats sont présentés cidessous: Virus Ad-TK: . titre 10 jours post-infection= 3.5 x 108 pfu/ml . titre 20 jours post-infection= 3.3 x 108pfiJml Virus Ad-ssGal . titre 8 jours post-infection= 5.8 x 108 ptidml . titre 9 jours post-infection= 3.6 x 108 pfu/ml . titrelO jours post-infection= 3.5 x 108 pfu/ml . titre 13 jours post-infection= 4.1 x 108pfu/ml . titre 16 jours post-infection= 5.5 x 108pfu/ml Les resultats obtenus montrent que, jusqu'a au moins 20 jours post-infection, le titre du surnageant est stable dans la limite de précision du dosage. Par ailleurs, la Figure 1 montre que, dans le tampon d'elution, le virus est stable au moins 8 mois, a 80 C comme a -20 C. Infectivité specifique des préparations Ce paaametre, correspondant au ratio du nombre de particules virales mesuré par HPLC sur le nombre de pfu, rend compte du pouvoir infectieux des preparations virales. Selon les recommandations de la FDA, il doit etre inferieur à 100. Ce parametre a ete mesure comme suit: Deux series de flacons de culture contenant des oellules 293 ont été infectées en parallele au même moment avec le même prestock viral dans les mêmes conditions. Cette expérience à été realisée pour un adenovirus recombinant Ad-bgal, puis repetée pour un adenovirus Ad-TK. Pour chaque adenovirus, une serie de flacons est récoltée 48 heures post-infection et est considérée comme une production de virus intracellulaire purifié sur gradient de cesium aprés congélation décongélation. L'autre serie est incubée 10 jours post-infection et le virus est récolté dans le surnageant. Les preparations purifiées obtenues sont titrées par plaque assay et la quantification du nombre de particules virales totales est determinée par la mesure de la concentration en proteine PVII par CLHP de phase mverse sur une colonne C4 Vydac 4.6x50 mm aprés denaturation des échantillons en guanidine 6.4M. La quantité de protéines PVII est correlée au nombre de particules virales considerant 720 copies de PVII par virus (Horwitz,Virology,second edition (1990)). Cette methode est correlée avec les mesures de particules virales sur preparations purifiées par la methode densitometrique à 260nm prenant pour coefficient d'extinction spécifique 1.0 unité d'absorbance =1.11012 particules par ml Les resultats obtenus montrent que, pour le virus Ad-(3Gal, ce ratio est de 16 pour le virus surnageant et de 45 pour le virus intracellulaire. Pour le virus Ad-TK, le ratio est de 78 dans le cas de la recolte de virus dans la méthode surnageant et de 80 pour le virus récolté par la méthode intracellulaire. Analyse en microscopie electronique: Cette methode permet de déceler la presence de particules vides ou sous unités virales libres copurifiées, ainsi que d'apprécier une contamination protéique des préparations virales purifiées ou la présence d'aggregats non dissociables de particules virales. Protocole: 20 p1 d'echantillon sont déposés sur une grille carbonée puis traités pour l'observation en coloration negative par l'cette d'uranyl à 1,5%. Pour l'observation, on utilise un microscope électronique Jeol 1010 de 50kV à 100 kV. Resultat: L'analyse effectuée sur un virus récolté dans le surnageant montre une péparation propre, sans contaminants, sans aggrégats et sans particules virales vides. Il est de plus possible de distinguer les fibres du virus ainsi que sa structure géométrique réguliére. Ces resultats confirment la grande qualite des particules virales obtenues selon l'invention. Analyse du profil proteique en HPLC et SDS PAGE: Analyse en SDS PAGE: 20p1 d'échantillon est dilué dans le tampon de Laemmli (Nature 227 (1970) 680-685), reduit 5 min à 95"c, puis chargé sur des gels Novex 1 mm x 10 puits gradient 4-20%. Aprés migration, les gels sont colorés au bleu de coomassie et analysés sur sur Image Master VDS Pharmacia. L'analyse révéle un profil electrophorétique pour le virus récolté dans le surnageant en accord avec les données de la litterature (Lennart Philipson, 1984 H.S Ginsberg editors, Plenum press, 310338). Analyse en HPLC reverse phase: La figure 2 montre la superposition de 3 chromatogrammes obtenus à partir de deux échantillons de virus récoltés en intracellulaire et un échantillon de virus purifié par la méthode surnageant. Les conditions experimentales sont les suivantes : colonne Vydac ref 254 Tp 5405, RPC4 4.6x50 mm, Solvant: : H20 +TFA0.07%; Solvant B: CH3CN+TFA 0.07%, gradient lineaire : T=Omin %B=25; T=50min toB=50to; Débit =1ml/min, detecteur =215 nm. Les chromatogrammes montrent une parfaite identité entre les échantillons, sans différence dans les intensités relative de chaque pic. La nature de chaque pic a été déterminée par séquencage et met en evidence que les protemes presentes sont toutes d'origine virale (Voir Tableau ci-dessous). PIC (Min) IDENTIFICATION 19-20 PrecurseurPVII 21-22 Precurseur PVll; Precurseur PX 1 a 12 27-28 Precursurr PVI; Precurseur PX 3233 Precurseur PX 34 35-36 PVII mature 37 PVII mature; PVIII precurseur 3941 PVI mature 45 pX 46 pIX Analyse in vitro de l'efficacité de transduction et de la cytotoxicité L'analyse de la cytotoxicité est effectuée en infectant des cellules HCT116 en plaques 24 puits pour des MOI croissantes et en determinant le pourcentage de cellules vivantes par rapport à un temoin non infecte, 2 et 5 jours post-infection, à l'aide de la technique de coloration au cristal violet. Les resultats sont presentes dans le tableau ci-dessous: Adenoviuus MOI=3.0 MOI=10.0 MOI=30.0 MOl=100.0 Surnageant,J2 91% 96% 87% 89 o Surnageant,J5 97% 90% 10% T Analyse de l'efficacité de transduction Pour un adenovirus AD-pGal, l'éfficacité de transduction d'une préparation est déterminée en infectant des cellules W162, non permissives à la réplication, cultivées en plaques 24 puits, avec des concentrations croissantes de particules virales. Pour une même quantité de particules virales déposées, on dénombre, 48 heures post-infection, les cellules exprimant l'activité betagalactosidase aprés incubation avec 1'X-gal comme substrat. Chaque cellule bleue est denombrée comme une unité de transduction (TDU), le résultat est multiplié par la dilution de l'échantillon afin d'obtenir la concentration en unité de transductions de l'échantillon. L efficacité de transduction est ensuite exprimée en faisant le rapport de la concentration en particules virales sur la concentration en TDU. Les resultats obtenus montrent que les virus purifies presentent une bonne efficacite de transduction in vitro. Analyse de l'expression intracerebrale In vivo Dans le but d'evaluer l'efficacite des adenovirus selon 1'invention pour le transfert et l'expression de genes in vivo, les adénovirus ont été injectés par voie stéréotaxique dans le striatum de souris immunocompétentes OF1. Pour cela, des volumes de i à 107 pfu de virus ont été injectés aux repères stéréotaxiques suivants (pour la barre d'incisives à Omm) : Antéro-postérieur: +0.5; Médio-latéral :2; Profondeur: -3.5. Les cerveaux ont été analysés 7 jours après l'injection. Les resultats obtenus montrent que l'efficacité de transduction est grande : milliers de cellules transduites, expression très intense dans le noyau et diffusion fréquente et intense dans le cytoplasme. 4.3. Cinetique de liberation du virus Cet exemple decrit une etude de la cinetique de liberation des adenovirus dans le surnageant de culture des cellules d'encapsidation. Cette etude a ete realisee par PCR semi-quantitative au moyen d'oligonucleotides complementaires de regions du genome de l'adenoviius. A cet effet, l'ADN viral linearise (1-10 ng) a ete incube en presence de dXTP (2 l, îOmM), d'un couple d'oligonucleotides specifiques et de Taq Polymerase (Cetus) dans un tampon 10XPCR, et soumis a 30 cycles d'amplification sans les conditions suivantes: 2 min a 91C, 30 cycles (1 min 91C, 2 min a temperature d'annealing, 3 min a 72C), 5 min 72C, puis 4C. Des experienoes de PCR ont ete realisees avec les couples d'oligonucleotides de sequence: - Couple 1: TAATTACCTGGGCGGCGAGCACGAT (6368) ACCTTGGATGGGACCGCTGGGAACA (6369) -Couple 2: TTTTTGATGCGTTTCTTACCTCTGG (6362) CAGACAGCGATGCGGAAGAGAGTGA (6363) - Couple 3: TGTTCCCAGCGGTCCCATCCAAGGT (6364) AAGGACAAGCAGCCGAAGTAGAAGA (6365) -Couple4: GGATGATATGGTTGGACGCTGGAAG (6366) AGGGCGGATGCGACGACACTGACTT (6367) La quantite d'adenovirus libere dans le surnageant a ete determinée sur un surnageant de oellules 293 infectées par 1'Ad-PGal, a differents temps post-infection. Les resultats obtenus sont presentes dans la figure 3. Ils montrent que la liberation cellulaire debute à partir du 5 ou 6eme jour post infection. ll est entendu que toute autre technique de detennination de virus peut etre utilisee dans le meme but, sur toute autre lignee d'encapsidation, et pour tout type d'adenovirus. Exemple 5: Purification du virus par ultrafiltration et échange d'ions Cet exemple illustre comment l'adénovirus contenu dans le concentrat peut être purifié directement et en une seule étape chromatographique d'échange d'ions, avec des rendements très élevés. 5.1. Protocole Dans cette expérience, le matériel de départ est donc constitué du concentrat (ou rétentat d'ultrafiltration) décrit dans l'exemple 4. Ce rétentat a une teneur en protéines totales comprise entre 5 et 50 mg/ml, et plus préférentiellement entre 10 et 30 mg/ml, dans du tampon PBS (10 mM phosphate, pH 7,2 contenant 150 mM NaCl). Le surnageant d'ultrafiltration obtenu à partir d'une préparation de virus est injecté sur une colonne contenant du gel Source Q 15 (Pharmacia) équilibrée dans du tampon Tris/HCl 100 mM pH 8,0 contenant 150 mM NaCl, 0,5 mM MgC12, 0,5 mM CaC12 et 10 % glycérol (tampon A). Après rinçage avec 5 volumes de colonne de tampon A, les espèces adsorbées sont éluées avec un gradient linéaire de NaCl (150 mM à 1 M) sur 60 volumes de colonne à un débit linéaire de 300 cm/h. Le profil d'élution à 260 nm est présenté sur la figure 4. La fraction contenant les particules virales est collectée. Elle correspond à un pic fin, symétrique, dont le temps de rétention coincide avec le temps de rétention obtenu avec une préparation de particules virales purifiées par ultracentrifugation. Il est possible d'injecter dans les conditions décrites çi-dessus, au minimum 30 mg de protéines totales par ml de gel Source Q 15 tout en conservant une résolution excellente du pic de particules virales. Dans une expérience représentative effectuée à partir d'une préparation d'un adénovirus ss-gal (Exemple 2), 12,6 mg de protéines totales ont été injectées sur une colonne Resource Q (1 ml), soit 5 x 1010 PFU et 1,6 x 1010 TDU. Le pic de particules virales collecté après chromatographie (3,2 ml; Fig. 5) contenait 173 Rg de protéines et 3,2 x 10'0 PFU et 2,3 x 1010 TDU. Les particules virales ont donc été purifiées 70 fois (en terme de quantité de protéines) et le rendement de la purification est de 64% en PFU et de 142 % en TDU (Voir Tableau cidessous). Etapes Concentration Voliunes Volumes Rendements Facteur de echantillon deposes recuperes Purification SURNAGEANT 5000m1 ml 100% - ULTRA- Proteines:6.3 mg/ml 5000 ml 200 ml 100 % 5 FILTRATION PFU:25x1010/ml 300 kd TDU:8.1x109/ml Particle 3.8x10/ml Part/pfu ratio:16.0 Part/tdu ratio:47.0 PFU:1.0x1010/ml Proteines=85% PURIFICAIIION TDU:7.2x109/ml 2.0 a de 3.0 ml PFU 70 ECHANGE Particle:2.0x10/ml concentrat elution TDU=140% IONS Particles=84% (une etape) Part/pfu ratio=20 Part/tdu ratio=27 HPLC Purete=98.4% PFU:1.0x10/ml) 28.3 ni de QSP 4.1 PFU=66% GRADJENT TDU:7.5x 101 /ml concentrat ml TDU=130to 70 ceci Partide:22x1O121m1 Parficles-44% Pan/pfu ratio=22 HPLC parMu ratio--29 purete-98.4% 5.2. Pureté Après cette étape de purification, la fraction collectée présente une pureté # 98% en particules virales (détection UV à 260 nm), lorsqu'elle est analysée par chromatographie liquide haute performance (CLHP) sur une colonne de Resouce Q (1 ml) dans un système chromatographique suivant: 10 l de la fraction purifiée par chromatographie comme décrit à l'exemple 5.1 sont injectés sur une colonne Resource Q15 (lml de gel; Pharmacia) équilibrée dans du tampon Tris/HCl 100 mM pH 8,0 contenant 0,5 mM MgC12, 0,5 mM CaC12 (tampon B). Après rinçage avec 5 ml de tampon B, les espèces adsorbées sont éluées avec un gradient linéaire de 30 ml de NaCl (O à 1 M) dans le tampon B à un débit de 1 ml/min. Les espèces éluées sont détectées à 260 nm. Cette analyse par CLHP (Figure 5) montre de plus que l'albumine sérique bovine résiduelle présente dans le rétentat d'ultrafiltration est totalement éliminée au cours de la chromatographie préparative. Sa teneur dans la fraction purifiée est estimée être L'analyse en électrophorèse de la fraction adénovirale purifiée par chromatographie est effectuée en gel de polyacrylamide (4-20 %) en conditions dénaturantes (SDS). Les bandes de protéines sont ensuite révélées au nitrate d'argent. Cette analyse montre que la préparation adénovirale obtenue par chromatographie a un niveau de pureté au moins égal à celui de la préparation ontenue classiquement par ultracentrifugation puiqu'elle ne présente pas de bande de protéines supplémentaire qui indiquerait une contamination de la préparation par des protéines non adénovirales. qui indiquerait une contamination de la préparation par des protéines non adénovirales. La préparation adénovirale obtenue par chromatographie présente un ratio d absorbance A 260 nm / A 280 nm égal à 1,30 1,30+0.05. Cette valeur, qui est identique à celle obtenue pour les meilleures préparation obtenues par ultracentrifugation, indique que la préparation est dépourvue de protéines contaminantes ou d'acides nucléiques contaminants. 5.3. Purification d'adénovirus comportant un gene therapeutique tel que les genes codant pour les protéines ApoAl ou thimidine kinase. Cet exemple illustre comment des adénovirus comportant dans leurs génomes des séquences d'acides nucléiques hétérologues codant pour des protéines thérapeutiques peuvent être purifiés directement et en une seule étape chromatographqiue d'échange d'ions. 1l montre aussi que le comportement chromatographique de l'adénovirus est indépendant des séquences d'acides nucléiques hétérologues qu'il porte, ce qui permet de mettre en oeuvre le même procédé de purification pour différents adénovirus porteurs de séquences d'acides nucléiques hétérologues diverses. Dans une expérience typique de purification, un adénovirus comportant dans son génome une séquence d'acides nucléiques hétérologue codant pour la protéine ApoAl (Exemple 2, W094/25073) est purifié en chromatographiant, dans le système décrit à l'exemple 5.1, 18 ml (72 mg de protéines; 1,08 x 10t3 particules) de surnageant concentré d'une culture cellulaire récoltée 10 jours post-infection (Figure 6A). Le pic de particules virales collecté après chromatographie (14 ml; 1,4 mg de protéines) contenait 9,98 x 1012 particules, ce qui indique un rendement en particules de 92% et un facteur de purification de 51. Après cette étape de purification, la fraction collecté présentait (Figure 6B) une pureté supérieure à 98% en particules virales lors de l'analyse chromatographique dans les conditions décrites en 5.2. L'analyse par électrophorèse de la fraction adénovirale purifiée par chromatographie effectuée dans les conditions décrites à l'exemple 5.2. a montré que cette préparation avait un niveau de pureté au moins égal à celui de la préparation obtenue classiquement par ultracentrifugation, et qu'elle est dépourvue de protéines contaminantes ou d'acides nucléiques contaminants. Dans une autre expérience typique de purification, un adénovirus comportant dans son génome une séquence d'acides nucléiques hétérologue codant pour la protéine thimidine kinase de herpès simplex de type 1 (Exemple 2, W095/14102) est purifié en chromatographiant dans le système décrit à l'exemple 5.1. 36 ml (180 mg de protéines; 4,69 x rétentat d'ultrafiltration et à la préparation virale purifiée ainsi obtenue est illustrée sur la Figure 8. Dans une autre expérience typique de purification de l'adénovirus, un adénovirus Fgal est purifié par chromatographie sur une colonne Poros HQ/M en suivant le protocole décrit à l'exemple 5.1. L'image chromatographique correspondant au rétentat d'ultrafiltration et à la préparation virale purifiée ainsi obtenue est illustrée sur la Figure 9. Exemple 6 : Purification du virus par ultrafiltration et perméation de gel Cet exemple illustre comment lladénovirus contenu dans le concentrat (rétentat d'ultrafiltration) peut être purifié directement par chromatographie de perméation de gel, avec des rendements très élevés. 6.1. Protocole 200 pi du rétentat d'ultrafiltration obtenu dans l'exemple 4 (soit 1,3 mg de protéines) sont injectés sur une colonne HR 10/30 (Pharmacia) remplie de Sephacryl S-1000SF (Pharmacia) équilibrée par exemple dans du tampon PBS, pH 7,2 contenant 150 mM NaCI (tampon C). Les espèces sont fractionnées et éluées avec le tampon C à un débit de 0,5 ml/min et détectées en sortie de la colonne en UV à 260 nm. Alternativement, on peut utiliser dans les même conditions de mise en oeuvre, une colonne remplie de Sephacryl S-2000, qui permet une résolution meilleure que la colonne Sephacryl S-1000HR pour des particules de 100 nm à 1000 nm. La résolution des deux systèmes chromatographiques de perméation de gel décrit çi-dessus peut être avantageusement améliorée en chromatographiant le surnageant d'ultrafiltration (200 1ll) sur un système de 2 colonnes HR 10/30 (Pharmacia) couplées en série (colonne de Sephacryl S-1000HR ou S-2000 suivie d'une colonne de Superdex 200 HR) équilibrées dans le tampon C. Les espèces sont éluées avec le tampon C à un débit de 0,5 ml/min et détectées en UV à 260 nm. Dans ce système, le pic de particules virales est très nettement mieux séparé des espèces de plus faible poids moléculaire que dans le système comportant une colonne Sephacryl S-1000 HR ou Sephacryl S-2000 seule. Dans une expérience représentative, un rétentat d'ultrafiltration (200 p1, 1.3mg de proteines) a été chromatographié sur un système de 2 colonnes Sephacryl S1000HR-Superdex 200 HR 10/30 (Figure 10). Le pic chromatographique contenant les particules virales a été collecté. Son temps de rétention coincide avec le temps de rétention obtenu avec une préparation de particules virales purifiées par ultracentrifugation. Le pic de particules virales collecté après chromatographie (7 ml) contennait 28 Mg de protéines et 3.5 109 PFU. Son analyse par chromatographie analytique d'échange d'ions dans les conditions décrites à l'exemple 5.2. montre la présence d'un pic contaminant plus fortement retenu sur la colonne d'analyse, dont la surface représentre environ 25% de la surface du pic viral. Son ratio d'absorbance 260nm/280nm qui a une valeur de 1,86 indique que ce pic contaminant correspond à des acides nucléiques. Les particules virales ont donc été purifiées environ 50 fois (en terme de quantité de protéines) et le rendement de la purification est de 85% en PFU. Alternativement, il est possible de chromatographier les préparations de particules virales (ultrafiltrats ou fractions en sortie de chromatographie d'échange d'anions) sur une colonne TSK G6000 PW (7,5 x 300 mm; TosoHaas) équilibrée dans le tampon C. Les espèces sont éluées avec le tampon C à un débit de 0,5 ml/min et détectées en UV à 260 nm. De même il peut être avantageux d'augmenter la résolution dusystème chromatographique, en particulier d'augmenter la séparation du pic de particules virales des espèces de plus faible poids moléculaire, en chromatographiant le surnageant d'ultrafiltration (50 à 200 p1) sur un système de 2 colonnes couplées en série [colonne de TSK G6000 PW (7,5 x 300 mm) suivie d'une colonne de Superdex 200 HR] équilibrées dans le tampon C. Les espèces sont éluées avec le tampon C à un débit de 0,5 ml/min et détectées en UV à 260 nm. Exemple 7: ication du vits par UItntfiltration. Echange d'ions et Permeation de Gel La fraction de particules virales issue de la chromatographie d'échange d'anions (exemple 5) peut être avantageusement chromatographiée dans l'un des systèmes chromatographiques par perméation de gel décrit çi-dessus, par exemple dans le but d'améliorer encore le niveau de pureté des particules virales, mais aussi principalement dans le but de conditionner les particules virales dans un milieu compatible ou adapté aux utilisations ultérieures de la préparation virale (injection,....). REVENDICATIONS 1. Procédé de production d'adénovirus recombinants caractérisé en ce que l'ADN viral est introduit dans une culture de cellules d'encapsidation et les virus produits sont récoltes apres liberation dans le surnageant. 2. Procédé selon la revendication 1 caractérisé en ce que la recolte est realisee lorsque 50% au moins des virus ont ete liberes dans le surnageant. 3. Procédé selon la revendication 1 caractérisé en ce que la recolte est realisee lorsque 70% au moins des virus ont ete liberes dans le surnageant. 4. Procédé selon la revendication 1 caractérisé en ce que la recolte est realisee lorsque 90% au moins des virus ont ete liberes dans le surnageant. 5. Procédé selon la revendication 1 caractérisé en ce que les virus sont recoltes par ultrafiltration. 6. Procédé selon la revendication 5 caractérisé en ce que l'ultrafiltration est une ultrafiltration tangentielle. 7. Procédé selon la revendication 5 ou 6 caractérisé en ce que l'ultrafiltration est realisee sur une membrane ayant un seuil de coupure inferieur a 1000 kDa. 8. Procédé selon la revendication 1 ou 5 caractérisé en ce que les virus sont recoltés par centrifugation. 9. Procédé selon la revendication 8 caractérisé en ce que les virus sont recoltés par centrifugation sur gradient de iodixanol,5,5'-[(2-hydroxy-1-3propanediyl)-bis (acetylamino)]bis[N,N'-bis(2,3dihydroxypropyl-2,4,6-triodo-1,3-benzenecarbo xamide]. 10. Procédé selon la revendication 1 caractérisé en ce que les virus sont recoltes par chromatographie d'echange d'anions. 11. Procédé selon la revendication 10 caractérisé en ce que la chromatographie d'echange d'anions est une chromatographie d'echange d'anions forts. 12. Procédé selon la revendication 11 caractérisé en ce que la chromatographie d'echange d'anions forts est realisee sur un support choisi parmi les gels Source Q, Mono Q, Q Sepharose, Poros HQ et Poros QE, les gels de type Fractogel TMAE et les gels Toyopearl Super Q. 13. Procédé selon la revendication 1 caractérisé en ce que les virus sont recoltes par chromatographie de permeation de gel. 14. Procédé selon la revendication 13 caractérisé en ce que la chromatographie de permeation de gel est realisee sur un support choisi parmi les gels Sephacryl S-500 HR, Sephacryl S-1000 SF, Sephacryl S-1000 HR, Sephacryl S-2000, Superdex 200 HR, Sepharose 2B, 4B ou 6B et TSK G6000 PW. 15. Procédé selon la revendication 1 caractérisé en ce que les virus sont recoltes par ultrafiltration suivie d'une chromatographie d'echange d'anions. 16. Procédé selon la revendication 15 caractérisé en ce que les virus sont recoltes par ultrafiltration suivie d'une chromatographie d'echange d'anions puis d'une chromatographie de permeation de gel. 17. Procédé selon la revendication 1 caractérisé en ce que les virus sont récoltés par ultracentrifugation, suivie d'une Ètape de chromatographie d'echange d'anions. 18. Procédé selon l'une des revendications precedentes caractérisé en ce que la cellule d'encapsidation est une cellule trans-complementant la fonction El de adenovirus. 19. Procédé selon la revendication 18 caractérisé en ce que la cellule d'encapsidation est une cellule trans-complementant les fonctions El et E4 de 1' adenovirus. 20. Procédé selon la revendication 18 caractérisé en ce que la cellule d'encapsidation est une cellule trans-complementant les fonctions El et E2a de l'adenovirus. 21. Procédé selon l'une des revendications 18 a 20 caractérisé en ce que la cellule est une cellule embryonnaire de rein humaine, un retinoblaste humain ou une cellule d'un carcinome humain. 22. Procédé de purification d'adénovirus recombinants a partir d'un milieu biologique caractérisé en ce qu'il comprend une etape de purification par chromatographie d'echange d'anions fort. 23. Procédé selon la revendication 22 caractérisé en ce que le milieu biologique est un surnageant de cellules d'encapsidation productrices dudit virus. 24. Procédé selon la revendication 22 caractérisé en ce que le milieu biologique est un lysat de cellules d'encapsidation productrices dudit virus. 25. Procédé selon la revendication 22 caractérisé en ce que le milieu biologique est une solution prepurifiee dudit virus. 26. Procédé selon la revendication 22 caractérisé en ce que la chromatographie est effectuee sur un support fonctionnalise avec une amine quaternaire. 27. Procédé selon la revendication 26 caractérisé en ce que le support est choisi parmi l'agarose, le dextran, l'acrylamide, la silice, le poly[styrenedivinylbenzene], le copolymere ethylene glycol-methacrylate, seul ou en melange. 28. Procédé selon la revendication 27 caractérisé en ce que la chromatographie est effectuee sur un gel Source Q, Mono Q, Q Sepharose, Poros HQ, Poros QE, Fractogel TMAE, ou Toyopearl Super Q. 29. Procédé selon la revendication 22 caractérisé en ce qu'il comprend une etape prealable d'ultrafiltration. 30. Procédé selon la revendication 29 caractérisé en ce que l'ultrafiltration est une ultrafiltration tangentielle sur membrane ayant un seuil de coupure compris entre 300etSOOkD. 31. Procédé selon la revendication 22 caractérisé en ce qu'il comprend une etape prealable de centrifugation. 32. Preparation virale purifiee obtenue selon le procede défini dans l'une quelconque des revendications précédentes. 33. Composition pharmaceutique comprenant une preparation virale selon la revendication 32 et un vehicule pharmaceutiquement acceptable.