Brevet FR2751663A1 — publié le 19980130

La présente invention concerne un procédé de mise en évidence d'une activité enzymatique de microorganismes. Un tel procédé peut être utilisé pour l'identification de microorganismes exprimant ou n'exprimant pas cette activité enzymatique. La détection et l'identification des microorganismes sont très importantes notamment en médecine, dans l'industrie agroalimentaire, pour le contrôle de l'environnement (par exemple le contrôle de l'eau...). Les microorganismes peuvent être recherchés pour leur pathogénicité, comme indicateurs de contamination, ou encore pour le contrôle de procédés de fabrication. Les techniques de détection et d'identification de microorganismes sont actuellement basées sur la recherche de séquence nucléotidiques caractéristiques, la recherche d'antigènes ou d'anticorps, la culture, en milieu sélectif ou non sélectif, ou encore sur la recherche d'activités métaboliques et notamment enzymatiques (par exemple activités d'osidases, d'estérases, de peptidases, d'oxydases, etc.). Le plus souvent, les procédés de détection et d'identification des microorganismes associent plusieurs de ces techniques. La culture est ainsi utilisée pour multiplier et sélectionner les microorganismes recherchés. Afin de simplifier leur détection, il a été proposé de mettre en évidence des activités biochimiques en introduisant des molécules produisant une coloration ou une fluorescence, directement dans le milieu de culture. De tels milieux sont appelés milieux de détection. Les activités biochimiques peuvent être mises en évidence par diverses méthodes telles que - la modification physico-chimique du milieu : changement de pH révélé à l'aide d'un indicateur coloré ou fluorescent (méthyl-umbelliférone), - le changement du potentiel redox révélé à l'aide d'un indicateur coloré (sel de tétrazolium) ou fluorescent, - la réaction d'une molécule produite par les microorganismes avec un composé présent dans le milieu, conduisant à une coloration, - l'hydrolyse de molécules libérant un composé coloré ou fluorescent (naphtol, coumarine). Les hydrolyses détectées sont en général le résultat de l'action d'une enzyme produite par le microorganisme sur un substrat enzymatique naturel ou synthétique. Ces activités enzymatiques sont par exemple celles des enzymes suivantes : estérases (par exemple lipases, phosphatases), osidases (B-galacto-sidase, P-glucuronidase, N-acétyl-hexosaminidase), peptidases (alanineaminopeptidase, trypsinase, gélatinase), DNAses, décarboxylases, désaminases, uréases, tryptophanases, oxydases, catalases, etc. On sait que les milieux gélifiés sont particulièrement bien adaptés à la culture et à l'isolement de microorganismes à partir d'un prélèvement, ainsi qu'à la détection de microorganismes "cibles" au sein d'un mélange de microorganismes. Sur ces milieux, les microorganismes forment des colonies détectables à l'oeil nu, et il est hautement souhaitable que les produits des activités biochimiques recherchées restent localisés sur leur site de production. Cela permet en effet de distinguer une colonie de ses voisines si elles n'expriment pas les mêmes activités. On peut ainsi utiliser diverses méthodes détectant par exemple des changements de pH (FR-A-2 671 100), des activités d'estérases (FR-2 457 323), des activités d'osidases (FR-A-2 684 110) etc. I1 est évidemment possible d'utiliser conjointement plusieurs de ces méthodes, afin de mettre en évidence plusieurs espèces ou souches, et/ou d'accroître la sensibilité et/ou la spécificité de la détection. On ne dispose pas actuellement de moyen, adapté aux milieux gélifiés, pour mettre en évidence des activités de L-Alanineaminopeptidases, D-Alanine-aminopeptidases et L-Leucine-aminopeptidases de microorganismes. En effet, les substrats enzymatiques utilisés jusqu'à présent libèrent des molécules colorées ou fluorescentes qui diffusent dans les milieux gélifiés et/ou qui ne sont révélées que par irradiation U.V. (cas de la naphtylamine ou de l'aminocoumarine) et/ou après action de réactifs (cas de la naphtylamine), ou dont la coloration est peu contrastée dans les milieux réactionnels utilisés en microbiologie (cas de la nitroaniline). On sait que la L-Leucine-aminopeptidase a été mise en évidence dans des coupes histologiques de mammifères grâce à un substrat enzymatique, la L-Leucine-3-(5-Bromo-indolamine), par abréviation L-Leu-BIA, qui produit après hydrolyse un composé coloré ; voir Pearson et ai., 1963, Lab. Invest., 12 : 712. En 1967, Yarborough et al., J. Reticuloendoth. Soc., 4 : 390 ont repris la technique de Pearson et al. dans des applications similaires (coupes histologiques). Ils ont précisé que l'ajout d'un mélange de ferri- et ferrocyanure de potassium ou de sulfate de cuivre inhibe la réaction. En 1975 Lojda et Havránková, Histochemistry, 43 : 355 proposèrent d'améliorer la méthode utilisant le substrat L-Leu-BIA par l'addition d'un mélange de sel de tétrazolium et de phénazine méthosulfate, la réaction colorée observée provenant alors de la réduction du sel de tétrazolium en formazan. Lors des travaux ayant conduit à la présente invention, on a recherché s'il était possible d'utiliser ce substrat enzymatique dans la détection de microorganismes cultivés notamment sur milieux gélifiés. Lors d'essais préliminaires, on a ajouté de la L-Leu-BIA dans un milieu, couramment utilisé pour la recherche d'osidases, qui est décrit à l'exemple 1 ci-après. Il n'a pas été possible de mettre en évidence une activité de peptidase, quel que soit le microorganisme cultivé dans ce milieu (Escherichia coli, Klebsiella, Citrobacter, Pseudomonas, Enterococcus, Staphylococcus, Streptococcus). En revanche, si l'on ajoute dans ce même milieu de la LLeucine-7-amino-4-méthyl-coumarine (L-Leu-AMC), une fluorescence est détectée avec certains de ces mêmes microorganismes. De même dans ce milieu, avec des substrats d'osidases (5-Bromo-4-chloro-3indolyl-ss-D-galactoside et 6-Chloro-3-indolyl-ss-D-glucuronide), on peut détecter les activités de ss-galactosidase et de ss-glucuro- nidase des microorganismes. L'ajout des réactifs proposés par Lojda et Havránková s'est traduit par une inhibition plus ou moins complète de la croissance des microorganismes sans permettre la révélation d'une activité de peptidase avec la L-Leu-BIA. De même, avec le milieu utilisé à l'exemple 2, on nta pas pu mettre en évidence une activité de peptidase avec L-Leu-BIA, alors que le substrat L-Leu-AMC permet de détecter cette activité dans le même milieu. On a maintenant découvert que l'absence de résultats avec les dérivés de BIA n'était pas due à une incompatibilité avec les microorganismes ou à une inhibition de leur multiplication en culture, mais était due essentiellement à des conditions de milieu. On a en effet découvert qu'il était possible de révéler l'activité de peptidase de microorganismes avec la L-Leu-BIA, en utilisant d'autres milieux de culture. Les raisons pour lesquelles certains milieux sont utilisables, et d'autres non, ne sont pas connues. Néanmoins, il est possible de déterminer et de mettre au point, par de simples expériences de routine, semblables à celles décrites dans la partie expérimentale ci-après, les milieux et/ou ingrédients qui conviennent ou qui ne conviennent pas. L'invention a donc d'abord consisté notamment à rechercher, et à montrer qu'il était possible de trouver, des milieux de culture dans lesquels les substrats de peptidases dérivés de la 5-bromoindolamine mentionnés ci-dessus sont utilisables pour mettre en évidence les activités enzymatiques correspondantes dans une culture de microorganismes. On a ainsi découvert notamment que le milieu suivant est utilisable - Extrait de levure O, 5-25 0,5-25 g/l - Peptone de gélatine O, 5-25 0,5-25 g/l - NaCl ...................................................... 0-50 g/l et éventuellement - Agent régulateur de pH, quantité suffisante pour pH = 3 à 9 et/ou - Agent gélifiant........................................ 5-35 g/l Le pH choisi est un pH qui convient pour le microorganisme étudié. Dans le cas d'un milieu gélifié, le pH est de préférence de 5 à 9. On peut ajuster le pH, par exemple, avec de l'acide chlorhydrique ou du carbonate de sodium. Si on ajoute à un tel milieu de la L-Leu-BIA, et si on ensemence avec des microorganismes, on obtient des colonies brunes ou incolores suivant que les microorganismes expriment ou non une activité de L-Leucine-aminopeptidase. Des résultats comparables ont été obtenus avec les substrats L-Ala-BIA et D-Ala-BIA. L'invention a donc pour objet l'utilisation d'au moins un composé de formule X-NH-R dans laquelle X représente un groupe 5-bromoindole-3-yle et R représente le reste acyle d'un acide aminé choisi parmi la leucine et l'alanine, comme agent révélateur permettant de mettre en évidence, par formation d'un produit coloré, une activité de peptidase dans une culture de microorganismes. En particulier le groupe R représente un reste acyle de L-Leu, L-Ala ou D-Ala. Les substrats dont l'utilisation fait l'objet de la présente demande n'inhibent pas la multiplication des microorganismes dans les milieux de culture appropriés. On peut donc utiliser l'agent révélateur en l'ajoutant au milieu de culture des microorganismes, avant le début de la culture ou en début de culture. L'un des avantages importants des agents révélateurs utilisés selon l'invention est qu'en présence de l'activité de peptidase recherchée, ils donnent des produits colorés qui ne diffusent pas dans le milieu gélifié. Ils peuvent donc être utilisés en milieu gélifié. Ils peuvent aussi, bien entendu, être utilisés en milieu liquide. Selon un mode de réalisation particulier, on peut ajouter à la culture, en outre, au moins un autre agent révélateur permettant de mettre en évidence par formation d'un produit coloré ou fluorescent, une activité enzymatique généralement différente de celle qui est mise en évidence à l'aide des composés de formule X-NH-R tels que définis ci-dessus. Il peut s'agir par exemple d'une activité d'estérase, d'osidase ou de peptidase. On peut ainsi obtenir des informations supplémentaires, en liaison avec une absence de coloration (ou de fluorescence) ou en liaison avec une coloration modifiée par rapport à la coloration obtenue avec un seul substrat enzymatique. L'autre agent révélateur choisi aura des propriétés différentes de celles des dérivés de BIA : par exemple, on choisira un autre agent révélateur capable de donner un produit réactionnel ayant une couleur différente de la couleur brune obtenue avec les dérivés de BIA. L'autre agent révélateur (ou second agent révélateur) permettra donc de révéler, grâce à sa couleur propre, ou grâce à sa fluorescence, la présence d'une activité enzymatique dont il est spécifique. Si l'activité de peptidase révélable par les dérivés de BIA est également présente, on obtiendra une coloration modifiée, différente de ladite couleur brune et différente aussi de ladite couleur propre donnée par le second agent révélateur. Des exemples d'utilisation de plusieurs substrats, ainsi que les informations qui peuvent en ressortir, sont donnés ci-après dans la partie expérimentale. Bien entendu, les résultats peuvent varier avec chaque espèce ou souche de microorganisme étudié. Chaque cas susceptible d'intérêt doit donc faire l'objet d'études préalables selon des expériences de routine. Les dérivés servant à mettre en évidence des activités enzymatiques différentes, et utilisables comme autres agents révélateurs, sont notamment des dérivés d'indoxyle, de coumarine, de résorufine, de naphtol, de naphtylamine, de nitrophénol, de nitroanîline, de rhodamine, d'hydroxyquinoléine, de fluorescéine, etc. Parmi ces dérivés qui peuvent être utilisés en association avec les dérivés de BIA, on peut citer notamment le 5-bromo-4chloro-3-indolyl-ss-D-glucuronide, le 6-chloro-3-indolyl-B-D- glucoside, la L-alanine-7-amino-4-méthyl-coumarine, le 4-méthylumbelliféryl-N-acétyl-ss-D-galactosaminide, le résorufine-ss-D-galac- toside, le sulfate de B-naphtyle, le naphtol AS-BI B-D-galactoside, le L-alanine ss-naphtylamide, l'o-nitrophénol-ss-D-galactoside, le carboxybenzoyle-L-arginine-p-nitroanilide, la rhodamine 110 bis-(Lleucine amide), l'hydroxyquinoléine-ss-D-glucoside, et le diacétate de fluorescéine. L'invention a également pour objet un procédé de mise en évidence d'une activité de peptidase dans une culture de microorganisme, dans lequel on ajoute au milieu de culture desdits microorganismes un agent révélateur permettant de mettre en évidence ladite activité par formation d'un produit coloré, caractérisé par le fait que ledit agent révélateur comprend au moins un composé de formule X-NH-R, dans laquelle X et R sont définis comme ci-dessus. On peut ajouter le composé X-NH-R avant le début de la culture, ou en cours de culture, ou même en fin de culture. L'invention a également pour objet un milieu de culture de microorganismes contenant, outre les ingrédients nécessaires à la culture desdits microorganismes au moins un composé de formule X-NH-R. Les dérivés de formule X-NH-R sont utilisés à des concentrations suffisantes pour donner des réactions colorées observables. Ces concentrations, qui peuvent être déterminées par expériences de routine, peuvent varier généralement de 25 à 2000 mg par litre de milieu de culture. Les caractéristiques et avantages de l'invention sont illustrés par les exemples suivants. EXEMPLES Exemple 1 Le milieu de culture contient, outre de l'eau - Peptone de viande * ..........................15 15 g/l - Peptone de caséine ** ........................ 3 g/l - NaCl ........................................ 5 g/l - Tampon Tris ...................................... 0,5 g/l - Na2HPO4 ........................................... 1 g/l - Citrate de sodium............................ 1 g/l - Glucose ....................................... 1 g/l - Pyruvate de sodium............................. 2 g/l - Agar ....................................... 13 g/l * commercialisé par : D.I.F.C.O. ** commercialisé par : D.I.F.C.O. A ce milieu, on ajoute soit de la L-Ala-BIA, soit de la L-Leu-BIA, soit de la L-Ala-AMC soit de la L-Leu-AMC, à des concentrations de 200 mg/l. On ensemence les différents milieux obtenus, répartis dans des boîtes de Petri, avec des microorganismes. Les boîtes ont été mises en incubation à 370C pendant 48 heures. Les colonies formées ont été examinées visuellement à la lumière ambiante et sous lampe U.V. (longueur d'onde = 365 nm) après 24 et 48 heures d'incubation. La couleur ou la présence de fluorescence ont été notées. Les microorganismes étudiés étaient : Escherichia coli, Klebsiella pneumoniae, Citrobacter freundii, Pseudomonas aeruginosa, Streptococcus agalactiae, Enterococcus faecium, Streptococcus pyogenes, Staphyiococcus epidermidis et Candida albicans. Les résultats sont présentés dans le tableau I ci-après TABLEAU I Souches L-Ala-AMC L-Ala-BIA L-Leu-AMC L-Leu-BIA E. coli 24 H Fluo1 -2 Fluo 48 H Fluo - Fluo K. pneumoniae 24 H Fluo - Fluo 48 H Fluo - Fluo C. freundii 24 H Fluo - Fluo 48 H Fluo - Fluo P. aeruginosa 24 H Fluo - - 48 H Fluo - Fluo S. agalactiae 24 H - - Fluo 48 H Fluo - Fluo E. faecium 24 H - - - 48 H Fluo - Fluo S. pyogenes 24 H - - Fluo 48 H Fluo - Fluo S. epidermidis 24 H - - - 48 H - - - C. albicans 24 H - - NT3 NT 48 H Fluo - NT NT 1 : Fluo = Fluorescence 2 : - = absence de fluorescence et/ou absence de coloration 3 : NT = non testé Le milieu utilisé dans cet exemple permet de mettre en évidence les activités L-Alanine-aminopeptidase et L-Leucineaminopeptidase avec les réactifs L-Ala-AMC et L-Leu-AMC, respectivement, mais lorsqu'on utilise la L-Ala-BIA, et la L-Leu-BIA aucune hydrolyse n'est détectée. Exemple 2 Dans un tampon phosphate 0,1 M pH 7,3 à 25 C on ajoute soit de la L-Leu-BIA soit de la L-Leu-AMC, à des concentrations de 400 mg/l. Les milieux obtenus ont été répartis dans les puits de plaques de microtitration et ensemencés avec des suspensions de microorganismes. Les plaques ont été mises en incubation 24 heures à 37 C. Les puits ont été examinés visuellement à la lumière ambiante et sous lampe U.V., comme précédemment. Après 24 et 48 heures d'incubation, la couleur ou la présence de fluorescence ont été notées. Les résultats sont présentés dans le tableau II ci après TABLEAU II Souches L-Leu-AMC L-Leu-BIA E. coli 24 H Fluo1 -2 48 H Fluo K. pneumoniae 24 H Fluo 48 H Fluo C. freundii 24 H Fluo 48 H Fluo P. aeruginosa 24 H - 48 H Fluo S. agalactiae 24 H Fluo 48 H Fluo E. faecium 24 H - 48 H Fluo S. pyogenes 24 H Fluo 48 H Fluo S. epidermidis 24 H - 48 H - 1 : Fluo = Fluorescence 2 : - = absence de fluorescence et/ou absence de coloration Ainsi, avec le milieu utilisé dans cet exemple, il est possible de mettre en évidence l'activité de L-Leucine-aminopeptidase avec L-Leu-AMC, mais lorsqu'on utilise la L-Leu-BIA aucune hydrolyse n'est détectée. Exemple 3 Le milieu de culture contient, outre de l'eau - Extrait de levure * .. ...... .............. .. 6 g/l - Peptone de gélatine ** ... ................... 5 g/l - NaCl ........... ................... 8 g/l - Na2CO3............................................... 0,1 g/l - Agar ..................... .....................13 g/l * commercialisé par BIO MERIEUX ** BIO-GELYTONE commercialisé par BIO MERIEUX A ce milieu on ajoute soit de la L-Ala-BIA, soit de la L-Leu-BIA, soit de la L-Ala-AMC, soit de la L-Leu-AMC, à des concentrations de 200 mg/l. On ensemence les différents milieux obtenus, répartis en boîtes de Petri, avec les mêmes microorganismes que ceux utilisés dans l'exemple 1. Les boîtes sont mises en incubation à 37 C pendant 48 heures. Les colonies formées ont été examinées visuellement à la lumière ambiante et sous lampe U.V. (longueur d'onde = 365 nm) après 24 et 48 heures d'incubation. La couleur ou la présence de fluorescence ont été notées. Les résultats sont présentés dans le tableau III ci-après TABLEAU III Souches L-Ala-AMC L-Ala-BIA L-Leu-AMC L-Leu-BIA E. coli 24 H Fluo1 Brun Fluo -2 Gram négatif 48 H Fluo Brun Fluo Brun K. pneumoniae 24 H Fluo Brun Fluo Gram négatif 48H Fluo "'Bj;n | Fluo Brun C. freundii 24 H Fluo Brun Fluo Brun Gram négatif 48 H Fluo Brun Fluo Brun P. aeruginosa 24 H Fluo Brun - Gram négatif 48 H Fluo Brun Fluo Brun S. agalactiae 24 H - - Fluo Gram positif 48 H F"'tjo"" Brun n Fluo E. faecium 24 H - - Gram positif 48 H Fluo Brun Fluo S. pyogenes 24 H - - Fluo Gram positif 48 H Fluo Brun Fluo S. epidermidis 24 H - - Gram positif 48 H - - - C. albicans 24 H - NT3 NT 48 H Fluo Brun NT NT 1 : Fluo = Fluorescence 2 : - = absence de fluorescence et/ou absence de coloration 3 : NT = non testé Le milieu utilisé dans cet exemple permet de mettre en évidence les activités de L-Alanine-aminopeptidase et de L-Leucineaminopeptidase avec la L-Ala-AMC et la L-Leu-AMC, respectivement, ainsi qu'avec la L-Ala-BIA et la L-Leu-BIA. Ces deux derniers substrats donnent cependant des réactions parfois plus tardives. En revanche, ils permettent de distinguer les bactéries à Gram négatif des bactéries à Gram positif. En effet - après 24 heures d'incubation avec L-Ala-BIA, les bactéries Gram positif ne donnent pas de coloration, alors que les bactéries Gram négatif donnent une coloration brune - et après 48 heures avec la L-Leu-BIA : les bactéries Gram positif ne donnent pas de coloration, alors que les bactéries Gram négatif donnent une coloration brune. Exemple 4 Dans le milieu de l'exemple 3, on a ajouté soit de la L-Leu-BIA soit de la L-Ala-BIA, seules ou en combinaison avec soit du 5-bromo-4-chloro-3-indolyl-ss-D-glucoside (X-Glu), soit du 6-chloro-3-indolyl-ss-D-glucoside (Z-Glu), soit du 4-méthylumbelliféryl-ss-D-glucoside (MUGl) soit du 5-Bromo-4-chloro-3-indolylacétate (X-Ac). Les concentrations de ces différents substrats sont les suivantes - L-Leu-BIA : 200 mg/l - L-Ala-BIA : 200 mg/l - X-Glu : 200 mg/l - Z-Glu : 200 mg/l - MuGl : 200 mg/l On ensemence ces différents milieux répartis dans des boîtes de Petri avec des microorganismes. Les souches étudiées sont les mêmes qu'aux exemples précédents. Les boîtes ont été mises en incubation à 37"C pendant 48 heures, et les colonies formées ont été examinées visuellement à la lumière ambiante et sous lampe U.V. (longueur d'onde = 365 nm). Les résultats d'observation des couleurs des colonies obtenues après 24 et 48 heures d'incubation sont présentés dans le tableau IV TABLEAU IV L-Ala-BIA L-Leu-BIA - X-Glu Z-Glu MUGI X-Ac - X-Glu Z-Glu MUGI X-Ac Souches N0du 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 milieu . E. coll 24H Brun Brun . Brun Brun. Brun - - -- - - Gram négatif 48 H Brun Brun Brun Brun Brun Brun Brun Brun Brun Gris Brun K. pneumoniae 24 H Brun Gris Gris Brun+ Gris - Bleu Gris- Fluo Gris Rose Fluo Rose Brun Gram négatif 48 H Brun Gris Gris- Brun+ Gris- Brun Bleu- Gris- Brun+ Gris Rose Fluo Brun Gris Rose Fluo Brun C. freundii 24 H Brun Gris Gris- Brun+ Gris Brun Gris Gris- Brun+ Gris Rose Fluo Rose Fluo Brun Gram négatii 48 H Brun Gris Gris- Brun+ Brun Brun Gris Gris- Brun+ Gris Rose Fluo Rose Fluo Brun P. aeruginosa 24 H Brun Brun Brun Brun Gris- - - - Gris Brun Gram négatif 48 H Brun Brun Brun Brun Gris- Brun Brun Brun Brun t: Gris Brun Brun S. agalactiae 24 H - - - - - - - - - 48 H Brun Brun Brun Brun Gris - - - - E. faecium 24 H - Bleu Rose Fluo Bleu - Bleu Rose Fluo Bleu 48 H Brun Gris- Rose- Brun+ Gris- - Bleu Rose Fluo Gris Bleu Gris Fluo Bleu Bleu S. pyogenes 24 H - - - - - - - - - 48 H Brun Brun Brun Brun Gris- - - - - Bleu S. epidermidis 24 H - - - - - - - - - 48 H - - - - Tur- - - - - quoise Sur les milieux 2, 3 et 4 il est possible de distinguer après 24 heures d'incubation les Enterococcus (E. faecium) qui seuls donnent une coloration autre que brune ou grise. Les milieux 2, 3 et 4 permettent aussi, après 24 heures de culture, de distinguer les bactéries Gram positif, qui présentent soit une absence de coloration soit une coloration autre que brune ou grise. Les milieux 7, 8 et 9 permettent des distinctions similaires, mais après 48 heures d'incubation. Sur le milieu 5 après 48 heures d'incubation seul S. epidermidis donne des colonies de couleur turquoise, les autres bactéries donnant des colonies brunes à grisbleu. On précise que lorsque les substrats ci-après sont présents seuls dans le milieu réactionnel, la présence d'une osidase et l'hydrolyse résultante du 5-bromo-4-chlororo-3-indolyl--D-gluco- side (X-Glu) entraîne l'apparition d'une couleur bleu turquoise, l'hydrolyse du 6-chloro-3-indolyl--D-glucoside (Z-Glu) entraîne l'apparition dwune couleur rose-pourpre. L'hydrolyse du 4-méthylumbelliféryl-ss-D-glucoside (MUGl) entraîne l'apparition d'une fluorescence bleue sous lampe U.V. (longueur d'onde = 365 nm) ; et que, en présence d'une estérase, lthydrolyse résultante du 5-bromo4-chloro-3-indolyl-acétate (X-Ac) entraîne l'apparition d'une couleur bleu turquoise. Exemple 5 Le milieu de culture contient, outre de l'eau - Extrait de levure * ........................... 6 g/l - Peptone de gélatine ** ....................... 5 g/l - NaCl ........................................ 8 g/l - Na2CO3.............................................. 0,1 g/l * commercialisé par BIO MERIEUX ** BIO-GELYTONE commercialisé par BIO MERIEUX A ce milieu, on ajoute soit de la L-Leu-BIA soit de la L-Ala-BIA, seules, ou en combinaison entre elles, ou en combinaison avec du 5-Bromo-4-chloro-3-indolyl-acétate (X-Ac). Les concentrations de ces différents substrats sont les suivantes - L-Leu-BIA : 300 mg/l - L-Ala-BIA : 300 mg/l - X-Ac : 200 mg/l Les milieux obtenus ont été répartis dans des plaques de microtitration et ensemencés avec des suspensions de microorganismes, comme précédemment. Les plaques ont été mises en incubation 48 heures à 37 C. Les couleurs des puits obtenues après 24 et 48 heures d'incubation sont présentées dans le tableau V TABLEAU V L-Leu-BIA L-Ala-BIA L-Ala-BIA+ L-Ala-BIA L-Leu-BIA + X-Ac Souches N du 1 2 3 4 milieu E. coli 24 H Brun . Brun Gris 48 H Brun Brun Brun Gris K. pneumoniae 24H Brun Brun Brun Gris 48 H Brun Brun Brun Gris C. freundii 24 H Brun Brun Brun Gris 48 H Brun Brun Brun Gris P. aeruginosa 24 H Brun Brun Brun Gris 48 H Brun Brun Brun Gris S. agalactiae 24 H - - Brun Gris-Bleu 48 H - Brun Brun Gris-Bleu E faecium 24 H - - Brun Gris-Bleu 48 H - - Brun Gris-Bleu S. pyogenes 24 H - - Brun Gris-Bleu 48 H Brun Brun Brun Gris-Brun S. epidermidis 24 H - - - Turquoise 48 H - - - Turquoise On voit qu'avec les milieux 3 et 4 il est possible de distinguer S. epidermidis des autres bactéries. Avec le milieu 1 il est possible de différencier des bactéries à Gram négatif de celles à Gram positif (sauf S. pyogenes) après 48 heures d'incubation. Le milieu 2 permet la différenciation des bactéries Gram positif et Gram négatif après 24 heures d'incubation. Exemple 6 Le milieu de culture contient, outre de l'eau : - Extrait de viande de boeuf * ...... 3 g/l - Peptone de gélatine **... ... 5 g/l - NaCl .......... 8 g/l - Agar .......... 15 g/l * commercialisé par BIO MERIEUX ** BIO-GELYTONE (BIO MERIEUX) On ajoute à ce milieu soit de la L-Ala-BIA, soit de la L-Ala-AMC, à des concentrations de 300 mg/l et de 200 mg/l, respectivement. On ensemence les différents milieux obtenus répartis en boîtes de Petri, avec des microorganismes. Les boîtes sont mises à incubation à 37 C pendant 48 heures. Les colonies formées ont été examinées visuellement à la lumière ambiante et sous lampe U.V. comme précédemment, après 24 et 48 heures dtincuba- tion. La couleur ou la présence de fluorescence ont été notées. Les résultats sont présentés dans le tableau VI ci-après. TABLEAU VI Souches L-Ala-AMC L-Ala-BIA E. coli 24 H Fluo1 Brun 48 H Fluo Brun K. pneumoniae 24 H Fluo Brun 48 H Fluo Brun C. freundii 24 H Fluo Brun 48 H Fluo Brun P. aeruginosa 24 H Fluo 48 H Fluo Brun S. agalactiae 24 H -2 48 H Fluo E faecium 24 H - 48 H Fluo S. pyogenes 24 H 48 H Fluo Brun S. epidermidis 24 H - 48H - C. albicans 24 H 48 H Fluo Brun 1 : Fluo = Fluorescence 2 : - = absence de fluorescence et/ou absence de coloration Avec le milieu utilisé dans cet exemple, il est donc possible de mettre en évidence l'activité de L-alanineaminopeptidase avec L-Ala-AMC ainsi qu'avec L-Ala-BIA. REVENDICATIONS 1. Utilisation d'au moins un composé de formule X-NH-R dans laquelle X représente un groupe 5-bromoindole-3-yle et R représente le reste acyle d'un acide aminé choisi parmi la leucine et l'alanine, comme agent révélateur permettant de mettre en évidence, par formation d'un produit coloré, une activité de peptidase dans une culture de microorganismes. 2. Utilisation selon la revendication 1, dans laquelle R représente un reste acyle de L-Leu, L-Ala ou D-Ala. 3. Utilisation selon l'une quelconque des revendications précédentes, dans laquelle ladite culture est réalisée en milieu gélifié. 4. Utilisation selon l'une quelconque des revendications 1 et 2, dans laquelle ladite culture est réalisée en milieu liquide. 5. Utilisation selon l'une quelconque des revendications précédentes, dans laquelle en outre on ajoute à ladite culture au moins un autre agent révélateur permettant de mettre en évidence, par formation d'un produit coloré ou fluorescent, une activité enzymatique différente de celle mise en évidence conformément à la revendication 1. 6. Procédé de mise en évidence d'une activité de peptidase dans une culture de microorganisme, dans lequel on ajoute au milieu de culture desdits microorganismes un agent révélateur permettant de mettre en évidence ladite activité par formation d'un produit coloré, caractérisé par le fait que ledit agent révélateur comprend au moins un composé de formule X-NH-R dans laquelle X représente un groupe 5-bromoindole-3-yle et R représente le reste acyle d'un acide aminé choisi parmi la leucine et l'alanine. 7. Milieu de culture de microorganismes contenant, outre les ingrédients nécessaires à la culture desdits microorganismes, au moins un composé de formule X-NH-R dans laquelle X représente un groupe 5-bromoindole-3-yle et R représente le reste acyle d'un acide aminé choisi parmi la leucine et l'alanine. 8. Milieu de culture selon la revendication 7, contenant de 25 à 2000 mg/l dudit composé. 9. Milieu de culture selon la revendication 7 ou 8, caractérisé par le fait qutil s'agit d'un milieu gélifié.