Brevet FR2751000A1 — publié le 19980116

ADN spécifiques des bactéries de l'espèce Neisseria meningitidis, leurs procédés d'obtention et leurs applications biologiques. L'invention est relative aux ADN spécifiques des bactéries de l'espèce Neisseria meningitidis (référencées ci-après par Nm), à leur procédé d'obtention et à leurs applications biologiques, en particulier pour la prévention et la détection d'infections à méningocoques et de méningites. On sait que Nm constitue l'un des principaux agents de la méningite cérébrospinale. Des études menées aux Etats-Unis ont montré que de 5 à 10% de la population sont porteurs asymptomatiques de souche(s) de Nm. Les facteurs de transmission de Nm sont mal connus. Pour une proportion des personnes infectées, Nm pénètre le flux sanguin, où elle peut provoquer une méningococcémie et/ou progresse dans le flux cérébrospinal pour provoquer une méningite. Sans traitement antibiotique rapide, l'infection peut se développer de manière fulgurante et devenir mortelle. Comparée aux autres pathogènes, Nm présente la caractéristique de pouvoir franchir la barrière hématoencéphalique afin de coloniser les méninges. L'étude de la pathogénicité de Nm est donc non seulement importante dans le cadre de la méningite, mais aussi dans le cadre de toute maladie touchant le cerveau. On conçoit donc l'intérêt de disposer d'outils spécifiques de cette espèce bactérienne pour les applications envisagées ci-dessus. Nm est génétiquement, biochimiquement et antigéniquement très proche des bactéries de l'espèce Neisseria gonorrhoeae (référencées ci-après par Ng) (homologie de 80 à 90% des séquences primaires d'ADN), alors que ces deux bactéries expriment des pathogénicités très différentes. En effet, Ng n'est responsable que d'inflammations localisées au niveau des muqueuses, généralement au niveau de l'appareil urogénital. Contrairement à Nm, Ng ne franchit pas la barrière hémato-encéphalique. Nm et Ng sont donc deux bactéries très proches présentant des pouvoirs pathogènes très différents. Il est clair que Nm présente des séquences d'ADN qui lui sont spécifiques et qui doivent intervenir au niveau de l'expression de son potentiel caractéristique d'invasion infectieuse. L'espèce Nm est subdivisée en sérogroupes basés sur la nature des polysaccharides capsulaires. Au moins 13 sérogroupes ont été définis, parmi lesquels les sérogroupes A, B et C sont responsables d'environ 90% des cas de méningites. Les groupes A et C sont observés dans les formes épidémiques de la maladie. Le groupe B est le sérogroupe le plus couramment isolé en Europe et aux Etats-Unis. La capsule, présente chez Nm et absente chez Ng, a servi de base pour l'élaboration de vaccins antiméningite méningococcique. Les polysaccharides de la capsule de Nm ont été utilisés pour l'élaboration d'un vaccin qui s'est montré efficace pour prévenir chez les adultes la méningite provoquée par les méningocoques de sérogroupes A, C, W135 et Y. Cependant, le polysaccharide de Nm groupe C s'est révélé faiblement immunogène chez les enfants de moins de deux ans, alors que le polysaccharide de Nm groupe B est non immunogène chez l'homme et partage des épitopes avec des glycoprotéines d'adhésion présentes dans les cellules neuronales humaines. Il n'existe donc pas de vaccin universel capable de prévenir les infections provoquées par l'ensemble des sérogroupes des méningocoques et capable de répondre à la variabilité antigénique propre aux pathogènes bactériens en général et à Nm en particulier. En raison de la réactivité croisée du polysaccharide groupe B de Nm avec les antigènes humain, de la multiplicité des sérogroupes et de la variabilité antigénique de Nm, les stratégies proposées à ce jour ne peuvent conduire à un vaccin efficace dans toutes les situations. Les recherches se sont alors concentrées sur l'étude d'éléments caractéristiques responsables de la spécificité de la pathogénèse méningococcique. La plupart des gènes qui ont été étudiés dans l'une quelconque des deux bactéries Nm ou Ng possèdent leur homologue dans la deuxième bactérie. De la même manière, la plupart des facteurs de virulence jusqu'ici identifiés dans Nm ont une contrepartie dans Ng, c'est-à-dire la piline, les protéines PilC, les protéines d'opacité et les récepteurs de la lactoferrine et de la transferrine. Les attributs spécifiques des méningocoques caractérisés dans l'art antérieur sont la capsule, les protéines Frp analogues aux toxines RTX, les protéines de la membre externe Opc, la peroxydase glutathione, la porine PorA et le gène rotamase. Parmi ceux-ci, seule la capsule est invariablement présente dans les souches virulentes de Nm. Cependant, de nombreux pathogènes extra-cellulaires possèdent une capsule sans pour autant traverser la barrière hématoencéphalique. Des attributs non encore identifiés doivent donc être responsables de la spécificité de la pathogénèse meningococcale. Ces attributs sont vraisemblablement encodés par des séquences d'ADN présentes parmi les méningocoques mais absentes chez les gonocoques. Les inventeurs ont développé une nouvelle voie d'approche basée sur l'isolement soustractif des gènes Nm-spécifiques, ces gènes devant être liés à la pathogénèse spécifique de Nm, et, plus particulièrement au franchissement de la barrière hémato-encéphalique. La méthode soustractive développée dans l'art antérieur a abouti à la production de marqueurs épidémologiques pour certains isolats de Nm. Ces marqueurs sont d'une utilité limitée : ils ne couvrent pas l'ensemble des sérogroupes de l'espèce Nm. Par contraste avec ces études, les travaux des inventeurs ont conduit, en confrontant Nm à l'ensemble du chromosome de Ng, cisaillé de manière aléatoire, à la mise au point de moyens pour cloner l'ensemble des ADN présents chez Nm et absents chez Ng, fournissant ainsi des outils de haute spécificité vis-à-vis de Nm et permettant ainsi de répondre pour la première fois à la variabilité génétique de l'espèce. L'invention a donc pour but de fournir des ADN Nmspécifiques et des moyens pour les obtenir, notamment en élaborant des banques formées exclusivement de ces ADN Nm-spécifiques. Elle vise également les produits dérivés de ces séquences d'ADN. L'invention vise également la mise à profit des caractères spécifique et exhaustif de ces banques pour élaborer des outils utilisables notamment en diagnostic, thérapie et prévention. Les ADN selon l'invention sont caractérisés en ce qu'il s'agit d'ADN présents chez Neisseria meningitidis, mais absents chez Neisseria gonorrhoeae, à l'exception des gènes impliqués dans la biosynthèse de la capsule polysaccharidique, frpA, frpC, opc, por A, et rotamase. Selon un aspect majeur, ces ADN sont spécifiques de Neisseria meningitidis et ce, en dépit de la variabilité génétique de cette espèce. Plus particulièrement, les ADN Nm-spécifiques sont absents de Neisseria lactamica et de Neisseria cinerea. De façon surprenante, la majorité des différences génétiques entre les souches de méningocoques et celles de gonocoques apparaissent regroupées en régions distinctes, qui correspondraient à des ilôts de pathogénécités comme précédemment décrit pour E. coli et Y. pestis. Ainsi, dans une disposition préférée de l'invention, ces ADN sont également caractérisés en ce qu'ils comprennent une ou plusieurs séquence(s), telle(s) que présente(s) sur le chromosome de Neisseria meningitidis Z2491 entre tufA et pilT, ou région 1 du chromosome, et/ou la ou les séquence(s) capable(s) de s'hybrider avec la ou les séquence(s) ci-dessus, sous réserve d'être spécifique(s) de Neisseria meningitidis. Par "spécifique", on désigne dans la description et les revendications les séquences de nucléotides qui ne s'hybrident qu'avec celles de Nm, dans des conditions d'hybridation données dans les exemples. Dans la région 1, sont regroupés des gènes de la capsule de Neisseria meningitidis. Des ADN de ce type présentent une séquence correspondant, pour tout ou partie, à SEQ ID N09, 13, 22 ou 30, et/ou à toute séquence se situant à plus ou moins 20 kb de ces SEQ ID sur le chromosome d'une souche de Nm, et/ou présentent une séquence capable de s'hybrider avec au moins un fragment de l'une quelconque de ces séquences. Dans une autre disposition préférée de l'invention, ces ADN sont également caractérisés en ce qu'ils sont constitués par une ou plusieurs séquence(s), telle(s) que présente(s) sur le chromosome de Neisseria meningitidis Z2491 entre pilQ et 2740, ou région 2 du chromosome, et/ou la ou les séquence(s) capable(s) de s'hybrider avec la ou les séquence(s) ci-dessus, sous réserve d'être spécifique(s) de Neisseria meningitidis. Des ADN selon cette disposition présentent une séquence correspondant, pour tout ou partie, à SEQ ID N01, 2, 4, 6, 7, 10, 15, 31 ou 34, et/ou à toute séquence se situant à plus ou moins 20 kb de ces SEQ ID sur le chromosome d'une souche de Nm, et/ou présentent une séquence capable de s'hybrider avec au moins un fragment de l'une quelconque de ces séquences. Dans encore une autre disposition préférée de l'invention, ces ADN sont également caractérisés en ce qu ils sont constitués par une ou plusieurs séquence(s), telle(s) que présente(s) sur le chromosome de Neisseria meningitidis Z2491 entre argF et opaB, ou région 3 du chromosome, et/ou la ou les séquence(s) capable(s) de s'hybrider avec la ou les séquence(s) ci-dessus, sous réserve d'être spécifique(s) de Neisseria meningitidis. Des ADN selon cette disposition sont caractérisés en ce qu'ils présentent une séquence correspondant pour tout ou partie à SEQ ID N08, 21, 23, 25, 26, 28, 29, 32 ou 35, et/ou à toute séquence se situant à plus ou moins 20 kb de ces SEQ ID sur le chromosome d'une souche de Nm, et/ou, présentent une séquence capable de s'hybrider avec au moins un fragment de l'une quelconque de ces séquences. Les régions 1, 2, 3, identifiées ci-dessus, présentent une forte proportion de séquences Neisseria meningitidis spécifiques, et entrent également dans le cadre de l'invention. D'autres ADN représentatifs de la spécificité vis-àvis de Neisseria meningitidis présentent une ou plusieurs séquences telle(s) que présente(s) sur le chromosome de Neisseria meningitidis Z2491, mais ne font pas partie des régions 1, 2, 3 définies ci-dessus. De tels ADN comprennent une ou plusieurs séquences correspondant pour tout ou partie à SEQ ID n03, 5, 11, 12, 14, 16, 17, 18, 19, 20, 24, 27 ou 33, et/ou à toute séquence se situant à plus ou moins 20 kb de ces SEQ ID sur le chromosome d'une souche de Nm, et/ou présentent une séquence capable de s'hybrider avec de telles séquences. Compte tenu des applications particulièrement visées, l'invention concerne plus spécialement les ADN ci-dessus impliqués dans la pathogénèse de l'organisme bactérien. Elle vise, en particulier, les ADN répondant à au moins l'une des caractérisations données ci-dessus, et codant pour une protéine exportée au-delà de la membrane cytoplasmique et/ou dont tout ou partie de leur séquence correspond à la région conservée desdits ADN. Selon d'autres dispositions, l'invention vise les vecteurs de transfert et d'expression, tels que plasmides, cosmides ou bactériophages, comportant au moins un ADN tel que défini ci-dessus. Elle vise aussi les cellules hôtes telles que transformées par au moins un ADN tel que défini cidessus. D'autres cellules hôtes de l'invention comportent des gènes ou des fragments de gènes spécifiques de Nm et sont caractérisées en ce que leur chromosome est délété d'au moins un ADN selon l'invention, en particulier d'un ADN responsable de la pathogénicité. Il s'agit plus spécialement de cellules bactériennes, notamment de Nm. L'invention a également pour objet les ARN dont la séquence correspond pour tout ou partie à la transcription d'au moins une séquence ou fragment de séquence d'ADN tel que défini ci-dessus. Les acides nucléiques anti-sens des ADN tels que définis ci-dessus, ou de fragments de ces ADN, font également partie de l'invention. Ces acides nucléiques anti-sens portent le cas échéant au moins un substituant telle qu'un groupe méthyle et/ou un groupe glycosyle. D'autres produits entrant dans le champ de l'invention sont constitués par des polypeptides. Ces polypeptides sont caractérisés en ce qu'ils présentent un enchaînement d'acides aminés correspondant à tout ou partie d'une séquence telle que codée par les acides nucléiques définis dans ce qui précède, ou telle que déduite des séquences de ces acides nucléiques. I1 s'agit avantageusement de polypeptides correspondant à tout ou partie de polypeptides exportés au-delà de la membrane cytoplasmique, plus spécialement de polypeptides correspondant à tout ou partie de ceux tels que codés par une région conservée. En variante, les polypeptides de l'invention peuvent être modifiés par rapport à ceux correspondant aux séquences d'acides nucléiques, et ce de manière à être particulièrement adaptés pour une application donnée, en particulier une application vaccinale. Par modification, on entend toute altération, déletion, substitution chimique, dès lors qu'elle n'affecte pas les propriétés biochimiques des polypeptides natifs correspondants. D'autres produits conformes à l'invention sont constitués par les anticorps dirigés contre les polypeptides ci-dessus. L'invention vise ainsi les anticorps polyclonaux, ainsi que les anticorps monoclonaux, caractérisés en ce qu'ils reconnaissent au moins un épitope d'un polypeptide tel qu'évoqué plus haut. Elle vise également les fragments de ces anticorps, plus particulièrement les fragments Fv, Fab, Fab'2. Les anti-anticorps capables de reconnaitre les anticorps définis ci-dessus, ou leurs fragments, selon une réaction de type antigène-anticorps, font également partie de l'invention. Conformément à l'invention, les différents produits considérés ci-dessus sont obtenus par voie de synthèse et/ou biologique en opérant selon les techniques classiques. Les acides nucléiques peuvent être également obtenus à partir de banques constituées d'ADN Nm- spécifiques, telles qu'élaborées selon une technique soustractive, cette technique comprenant - le mélange de deux populations d'ADN, - la réalisation d'au moins une itération d'hybridation-amplification soustractive, et - la récupération du ou des ADN souhaités, suivie le cas échéant de leur purification avec l'élimination des séquences redondantes. Conformément à l'invention, les deux populations d'ADN proviennent respectivement d'une souche de Neisseria meningitidis, dite souche de référence, pour laquelle la banque spécifique doit être constituée, et d'une une souche de Neisseria gonorrhoeae, dite souche de soustraction, présentant une homologie en séquences primaires d'ADN supérieure à environ 75% avec la souche de Neisseria meningitidis, les séquences d'ADN des souches de soustraction et de référence étant telles qu'obtenues respectivement par cisaillement aléatoire, et par clivage par une endonucléase de restriction capable de produire des fragments de taille inférieure à environ lkb. L'invention vise en particulier un procédé d'obtention de banques d'ADN Neisseria meningitidis spécifiques, comportant les étapes de - cisaillement aléatoire de 1'ADN d'une souche Neisseria gonorrhoeae, dite souche de soustraction, notamment par passages répétés à travers une seringue, - clivage de 1'ADN d'une souche de Neisseria meningitidis, dite souche de référence, de préférence par une enzyme de restriction produisant des fragments de taille inférieure à lkb environ, - ligature des fragments d'ADN de la souche de référence, clivés par l'enzyme de restriction, avec des amorces oligonucléotidiques appropriées, - réalisation d'une itération d'hybridationamplification soustractive par mélange des deux populations d'ADN dans des conditions appropriées pour l'hybridation des séquences homologues, puis amplification des fragments auto-réannelés et récupération de ces fragments, digestion de ces fragments par une enzyme de restriction, et re-ligature à des amorces oligonucléotides suivie d'une - purification de llADN ligaturé, et le cas échéant, d'une nouvelle itération d'hybridation soustractive, comportant le mélange de fragments d'ADN de Neisseria gonorrhoeae cisaillé comme indiqué ci-dessus avec les fragments d'ADN de Neisseria meningitidis issus de l'itération précédente, suivi, si on le souhaite du clonage des ADN de la banque. Les amorces utilisées sont des amorces oligodésoxynucléotidiques adaptées à l'endonucléase de restriction utilisée et permettant une insertion dans un site de clonage, tel que le site EcoRI du plasmide pBluescript. On choisira avantageusement de telles amorces parmi les oligodésoxynucléotides référencés dans le listing de séquence sous SEQ ID n036 à 45. Les banques ainsi obtenues sont formées d'ADN spécifiques des méningocoques et absents chez les gonocoques. La spécificité des ADN a été vérifiée comme exposé dans les exemples, à chaque itération par Southern blots, avec des gènes communs à la souche de soustraction et à la souche de référence, ou avec 1'ADN total de chacune des souches digéré par une endonucléase de restriction, telle que ClaI. A chaque itération, a également été vérifiée l'exhaustivité de la banque d'ADN par Southern blotting avec des sondes connues pour être spécifiques de la souche de référence, à savoir pour Neisseria meningitidis, les gènes frp, opc, rotamase, notamment. Les expériences réalisées ont montré que les banques obtenues selon le procédé de l'invention sont dépourvues des gènes présentant une homologie significative avec des espèces de Neisseria autre que Neisseria meningitidis, par exemple les gènes, ppk ou pilC1, et ce généralement, en seulement 2 ou 3 itérations. Si nécessaire, deux voies, non exclusives l'une de 1'autre, peuvent être empruntées Il est possible de procéder à une (n+1)ème itération, en utilisant 1'ADN de l'itération n comme population d'ADN de la souche de référence. En variante, on réalise une deuxième banque, indépendante de la première, avec une enzyme de restriction de spécificité différente de celle utilisée dans la première banque, par exemple MboI. Dans tous les cas, il est préférable de conserver chacun des produits issus de chacune des itérations réalisées. Le procédé d'obtention de ces banques et les banques elles-mêmes font également partie de l'invention. On observera que de manière générale ce procédé est applicable pour l'obtention de banques d'ADN spécifiques d'une espèce de cellule donnée ou d'un variant donné d'une même espèce, dès lors qu'il existe une autre espèce ou un autre variant proche génomiquement et exprimant des pouvoirs pathogènes différents. En appliquant le procédé de l'invention, on constituera avantageusement des banques d'ADN spécifiques d'espèces données de cryptocoques, d'Haemophilus, de pneumocoques ou encore d' Escherichia coli, ou plus généralement de tout agent bactérien appartenant à la même espèce et disposant de pathovars différents. De même, à partir de ces banques, l'invention fournit les moyens de disposer de facteurs de virulence spécifiques d'une espèce ou d'un variant donné. De telles banques constituent donc des outils présentant un intérêt majeur pour disposer d'attributs responsables de la spécificité d'un pathogène, cette application étant plus spécialement illustrée conformément à l'invention par l'obtention de banques renfermant les attributs responsables de la spécificité de la pathogénèse méningococcique. L'étude des produits de l'invention, acides nucléiques, polypeptides et anticorps, a permis de mettre en évidence une spécificité absolue vis-à-vis de Neisseria meningitidis, quelle que soit la souche et sa variabilité. Ces produits sont donc particulièrement appropriés pour le diagnostic ou la prévention des infections et méningites provoquées par Neisseria meningitidis, que ce soit chez l'adulte ou l'enfant et quel que soit le sérogroupe de la souche en cause. La méthode de diagnostic, selon l'invention, d'une infection meningococcique, et plus particulièrement de la méningite méningococcique, par mise en évidence de la présence de Neisseria meningitidis dans un échantillon à analyser, est caractérisé par les étapes de - mise en contact, d'un échantillon à analyser, à savoir un échantillon biologique ou une culture cellulaire, avec un réactif élaboré à partir d'au moins un acide nucléique tel que défini ci-dessus, le cas échéant sous forme de sonde nucléotidique ou d'amorce, ou en variante à partir d'au moins un anticorps, ou un fragment d'anticorps, tel que défini ci-dessus, dans des conditions permettant respectivement une hybridation ou une réaction de type antigène-anticorps, et - révélation du produit de réaction éventuellement formé. Lorsque le réactif est élaboré à partir d'un acide nucléique, celui-ci peut se présenter sous forme de sonde nucléotidique dans laquelle l'acide nucléique, ou un fragment de ce dernier, est marqué afin de permettre sa révélation. Des marqueurs appropriés comprennent des marqueurs radio-actifs, fluorescents, enzymatiques ou luminescents. En variante, l'acide nucléique est inclus dans une cellule hôte, utilisée comme réactif. Dans ces différentes formes, l'acide nucléique est utilisé tel quel ou sous forme d'une composition avec des véhicules inertes. Lorsque le réactif est élaboré à partir d'un anticorps, ou d'un fragment d'anticorps, celui-ci peut être marqué aux fins de révélation. Le plus couramment, on utilise un marqueur fluorescent, enzymatique, radioactif ou luminescent. L'anticorps, ou le fragment d'anticorps utilisé, le cas échéant, marqué, peut être utilisé tel quel ou sous forme d'une composition avec des véhicules inertes. L'échantillon utilisé dans l'étape de mise en contact est un échantillon biologique, issu dlun mammifère, tel que liquide céphalo-rachidien, urine, sang, salive. L'étape de révélation est réalisée dans des conditions permettant de mettre en évidence le produit de réaction lorsqu'il s'est formé. Des moyens classiques mettent en oeuvre des réactions de fluorescence, luminescence, colorées, radio-actives ou encore des techniques d'autoriadographie. Il est également possible de quantifier le produit. Les produits marqués, acides nucléiques et anticorps font également partie en tant que produits nouveaux de l'invention. La méthode définie ci-dessus peut être appliquée au diagnostic d'une réaction immunitaire spécifique d'une infection méningococcique. On utilise alors comme réactif un polypeptide conforme à l'invention, tel que codé par lesdites séquences d'acides nucléiques, correspondant au produit natif, ou un polypeptide modifié, mais possèdant l'activité biologique et immunologique de polypeptide natif correspondant. Il s'agit avantageusement d'un polypeptide tel qu'exporté au-delà de la membrane cytoplasmique de Neisseria meningitidis, plus particulièrement de la partie d'un tel polypeptide correspondant à la région conservée de l'ADM. L'invention vise également des kits pour la mise en oeuvre des méthodes définies ci-dessus. Ces kits sont caractérisés en ce qu'ils comportent - au moins un réactif tel que défini ci-dessus, à savoir de type acide nucléique, anticorps ou polypeptide, - les produits, notamment marqueurs ou tampons, permettant la réalisation de la réaction d'hybridation nucléotidique ou de la réaction immunologique visée, ainsi qu'une notice d'utilisation. La spécificité des produits de l'invention et leur localisation sur le chromosome de Neisseria meningitidis Z2491 soit regroupés en région, pouvant être interprétées comme des îlots de pathogénécité, soit isolés sur le chromosome, leur confèrent un intérêt tout particulier pour la réalisation de compositions vaccinales à visée universelle, c' est-à-dire quelque soit la souche et la variabilité qu'elle exprime. Ces compositions peuvent inclure dans leur spectre d'autres prophylaxies, et être, par exemple, associées aux vaccins de l'enfance. L'invention vise donc des compositions vaccinales incluant dans leur spectre une prophylaxie à visée antiméningococcique, destinées à prévenir toute infection susceptible d'être provoquée par Neisseria meningitidis, ces compositions étant caractérisées en ce qu'elles comprennent, en association avec un ou des véhicule(s) physiologiquement acceptable(s), une quantité efficace de polypeptides ou d'anti-anticorps ou de leurs fragments tels que définis ci-dessus, ces produits étant éventuellement conjugués, afin de renforcer leur immogénicité. Des molécules immunogènes utilisables comprennent la protéine de polyovirus, la toxine tétanique, ou encore la protéine issue de la région hypervariable d'une piline. En variante, les compositions vaccinales selon l'invention sont caractérisées en ce qu'elles comprennent, en association avec un/des véhicule(s) physiologiquement acceptable(s), une quantité efficace - d'acides nucléiques tels que définis ci-dessus, - de cellules hôtes transformées telles que définies plus haut, ou - de cellules de Nm dont le chromosome a été délété d'au moins une séquence d'ADN selon l'invention impliquée dans la pathogénicité de la bactérie. Le matériel nucléotidique utilisé est avantageusement placé sous le contrôle d'un promoteur favorisant son expression in vivo et la synthèse de la protéine correspondante. Il est également possible afin de renforcer l'immunogénicité, d'associer ce matériel nucléique avec un ADN ou un ARN encodant une molécule porteuse telle que protéine de polyovirus, toxine tétanique, protéine issue de la région hypervariable d'une piline. Les compositions vaccinales de l'invention sont administrables par voie parentérale, sous-cutanée, intramusculaire ou encore sous forme de spray. D'autres caractéristiques et avantages de l'invention sont donnés dans les exemples qui suivent afin d'illustrer celle-ci sans toutefois en limiter sa portée. Dans ces exemples, il sera fait référence aux figures 1 à 3 qui représentent respectivement - les figures 1A, 1B, 1C, 1D, 1E, 1F et 1G l'analyse de la banque soustractive Tsp5091, - la figure 2, la distribution de séquences Nmspécifiques sur le chromosome de la souche Z2491, et - la figure 3A à 3C, la réactivité des clones des 3 régions du chromosome, selon l'invention, envers une panel de souches du genre Neisseria. Dans les exemples qui vont suivre, les matériels et méthodes suivants ont été utilisés Souches bactériennes - Pour la réalisation des banques soustractives, la souche Z2491 de Nm (Achtman et ai., 1991, J. Infect. Dis. 164, 375-382) et la souche MS11 de Ng (Swanson et al., 1974, Infect. Immun. 10, 633-644) ont été utilisées. Afin de vérifier la spécificité de ces banques, 6 souches de Nm, 4 souches de Ng, une souche de Ml (Neisseria lactamica) et une souche de Nc (Neisseria cinerea) ont été utilisées. Les six souches de Nm sont : Nm Z2491 de sérogroupe A, Nm 8013 de sérogroupe C (XN collection), Nm 1121 non sérogroupable (XN collection), Nm 1912 sérogroupe A (XN collection), Nm7972 de sérogroupe A (XN collection) et Nm 8216 de sérogroupe B (XN collection). Les quatre souches de Ng sont : Ng MSll (Institut Pasteur, Paris), Ng 403 (Institut Pasteur, Paris), Ng 6934 (Institut Pasteur, Paris) et Ng WI (isolée à partir d'une infection gonococcique disséminée). La souche de Ml est Ml 8064 (XN collection) et celle de Nc, Nc 32165 (XN collection). Techniques de génétique moléculaire Sauf indication contraire, les techniques et réactifs utilisés correspondent à ceux recommandés par Sambrook et al (Sambrook et al 1989, Molecular Cloning: A Laboratory Manual. Cold Spring Harbor Laboratory Press). Les oligodésoxynucléotides utilisés dans cette étude sont les suivants RBaml2, GATCCTCGGTGA; RBam24, AGCACTCTCCAGCCTCTCACCGAG; JBam12, GATCCGTTCATG; JBAM24, ACCGACGTCGACTATCCATGAACG; REcol2, AATTCTCGGTGA; REco24, AGCACTCTCCAGCCTCTCACCGAG; JEcol2, AATTCGTTCATG; JEco24, ACCGACGTCGACTATCCATGAACG; NEcol2, AATTCTCCCTCG; NEco24, AGGCAACTGTGCTATCCGAGGGAG. Transferts sur membranes (Southern blots) Les transferts sur membranes ont été réalisés par transferts capillaires sur des membranes en nylon chargées positivement (Boehringer Mannheim). Les hybridations ont été réalisées à 650C dans une solution comprenant NaPi 0,5M pH7,2/EDTA lmM/SDS 7%/ BSA 1%. Les lavages des membranes ont été réalisées dans une solution comprenant NaPi 40mM pH7,2/EDTA lmM/SDS 1%. Le lavage final a été réalisé à 650C pendant 5 min. La sonde frp, obtenue avec des oligonucléotides basés sur la séquence de frpA correspond à 2,4 kb de l'extrémité 5' du gène de la souche Z2491. Les sondes opc et rotamase correspondant aux gènes entiers sont produites à partir de la souche Z2491 en utilisant des oligonucléotides réalisés sur la base de séquences publiées. Les sondes pilC1 et ppk (polyphosphate kinase) correspondent aux inserts des plasmides pJL1 et pBluePPK6001, respectivement. Exemple 1 : Réalisation de banques d'ADN présents chez Nm et absents chez Ng. a. Banque "MboI" Réalisation - L'ADN de Nm Z2491 a été clivé par l'endonucléase MboI et soumis à deux itérations d'une méthode, appelée ci-après CDA (Comprehensive Difference Analysis). Cette méthode comprend une hybridation soustractive en présence d'un excès d'ADN cisaillé de Ng MSll et une amplification par PCR de celles des séquences méningococciques qui, étant absentes de ou ne présentant pas d'homologie significative avec l'ADN de Ng MSîl, pouvaient se ré-anneler. L'ADN chromosomique de la souche Ng MSll est cisaillé de manière aléatoire par passages répétés à travers une seringue hypodermique jusqu a obtention de fragments dont la taille s'échelonne de 3 à 10 kb. Ces fragments d'ADN sont purifiés par extraction phénolique. L'ADN chromosomique de la souche Nm Z2491 est, quant à lui, clivé par l'endonucléase de restriction MboI. Ces fragments d'ADN (20 ug) sont ligaturés à 10 nmoles des oligonucléotides annelés RBaml2 et RBam24. Les amorces en excès sont éliminées par électrophorèse sur un gel d'agarose à 2% à bas point de fusion. La partie du gel contenant des fragments amplifiés de taille supérieure à 200 pb est excisée et digérée par la 13-agarase. Ces fragments sont purifiés par extraction phénolique. Afin de réaliser une hybridation soustractive (première itération), 0,2 ug dlADN Nm, ligaturé aux oligonucléotides RBam, est mélangé à 40 ug d'ADN Ng dans un volume total de 8 ml d'un tampon EE 3X (un tampon EE 1X est composé de N-(2-hydroxyéthyl) pipérazine-N'-(acide sulphonique propane 3) 10 mM et d'EDTA 1 mM, son pH est de 8.0). Cette solution est recouverte d'huile minérale et llADN est dénaturé par chauffage à 1000C pendant 2 min. 2 ul de NaCl 5M sont ajoutés et on laisse le mélange s'hybrider à 55"C pendant 48h. Le mélange réactionnel est dilué à 1/10 dans une solution préchauffée composée de NaCl et de tampon EE, puis immédiatement placé sur de la glace. 10 ul de cette dilution sont ajoutés à 400 ul de mélange réactionnel pour PCR (Tris.HCl pH9.0 10mM; KCl 50 mM; MgCl2 1,5 mM; Triton X100 0,1 %; 0,25 mM de chacun des quatre désoxynucléotides triphosphate ; Taq polymérase 50 unités par ml) . Le mélange est incubé pendant 3 min à 70"C pour compléter les extrémités des fragments ré-annelés d'ADN méningococciques. Après dénaturation à 94"C pendant 5 min et addition de l'oligonucléotide RBam24 à raison de 0,1 nmole par 100 ul, les hydridations sont amplifiées par PCR (30 cycles de 1 min à 940C, 1 min à 700C et 3 min à 720C suivis par 1 min à 940C et 10 min à 720C; Perkin-Elmer GeneAmp 9600). Les fragments méningococciques amplifiés sont séparés sur gel des amorces et des ADN gonococciques de hauts poids moléculaires. Ils sont digérés par MboI et de nouveaux oligonucléotides JBaml2 et JBam24 leur sont ligaturés. Ces ADN ligaturés sont à nouveau purifiés sur gel et extraits au phénol. Une seconde itération d'hybridation soustractive est réalisée sur 40 ug dlADN Ng cisaillé de manière aléatoire et 25 ng dlADN ligaturé aux oligonucléotides JBam tel qu'obtenu à l'issue de la première itération d'hybridation soustractive. Lors de cette seconde itération, l'amplification de llADN Nm auto-annelé est réalisée à l'aide de lloligonucléotide Jbam24. Spécificité - Afin de confirmer leur Nmspécificité, les séquences amplifliées après la seconde itération de la méthode CDA sont marquées et utilisées comme sonde pour de llADN digéré par ClaI issu d'un panel de six souches de Neisseria meningitidis, quatre de Neisseria gonorrhoeae, une de Neisseria lactamica et une de Neisseria cinerea. Les Southern blots réalisés montrent que les séquences amplifliées à l'issue de la seconde itération de la méthode CDA présentent une forte réactivité avec de nombreuses bandes correspondant aux meningocoques et ne présentent pas de réactivité avec les bandes correspondant aux souches Ng, Ml, Nc. La banque "MboI" apparaît donc comme Nm-spécifique. Exhaustivité - Afin de tester l'exhaustivité de la banque, l'ensemble des produits issus de la première et de la seconde itérations de la méthode CDA ainsi que les matériaux chromosomiques initiaux de Nm Z2481 et de Ng MSll sont soumis à électrophorèse sur gel d'agarose, transférés sur membrane et mis en contact avec des sondes comprenant des gènes connus pour être méningococcusspécifiques, à savoir frp, opc, rotamase (Southern blot). Il résulte de ces hybridations que le gène Nmspécifique frp est représenté dans la banque MboI par un fragment de 600 pb, mais qu'aucune activité n'est observée pour les gènes rotamase et opc. La banque MboI, bien que Nm-spécifique, ne peut donc être considérée comme exhaustive. Etant donné leur haute spécificité, les fragments issus de la seconde itération de la méthode CDA pour la banque MboI peuvent néanmoins être clonés sur le site BamHI du plasmide pBluescript. Une séquence correspondant à un quelconque des gènes Nm-spécifiques ne peut être incluse dans la banque soustractive que si elle est portée par un fragment de restriction de taille appropriée. Cette condition est fonction de deux facteurs. Premièrement, la probabilité pour que les plus grands fragments soient entièrement Nmspécifiques est faible. Deuxièmement, même si de tels fragments existaient, ils seraient sous-représentés dans la banque du fait des limitations de la technique PCR dont l'efficacité d'amplification diminue avec l'augmentation de la taille des fragments. Les fragments de taille supérieure à environ 600 pb ne sont pas inclus dans la banque. Du fait de l'abscence, dans le chromosome de Nm Z2491, de fragments Mbo de taille appropriée, les gènes rotamase et opc ne peuvent être inclus dans la banque. Une enzyme quelconque ne peut à elle seule produire un petit fragment correspondant à un gène Nmspécifique quelconque. Une deuxième banque a donc été réalisée en utilisant une autre enzyme de restriction avec une spécificité différente : Tsp509. b. Banque "Tsp509I" Réalisation - L'enzyme Tsp5091 présente l'avantage de produire des fragments de plus petite taille (inférieure à 1 kb environ) que l'enzyme MboI. Tsp509I reconnaît la séquence AATT et laisse, en saillie en 5', une séquence de 4 bases compatible avec EcoRI. Les oligonucléotides utilisés sont Reco, Jeco et MEco. La méthode suivie est conforme à celle suivie pour la réalisation de la banque "MboI" décrite ci-dessus. De plus fortes quantités dlADN méningococciques ont cependant été utilisées pour la première itération d'hybridation soustractive afin de compenser le plus grand nombre de fragments de faibles poids moléculaires produits par Tsp509I. Pour la première itération, 400 ng de fragments d'ADN Nm et, dans la seconde, 25 ng de fragments Nm sont soumis à hybridation soustractive avec 40 pg d'ADN Ng cisaillé de manière aléatoire. Pour la réalisation de cette banque "Tsp509I", à titre de contrôle, une troisième itération d'hybridation soustractive est réalisée en utilisant 40 ug d'ADN Ng cisaillé et 0,2 ng de fragments Nm résultant d'une digestion par Tsp509I et d'une re-ligature aux adaptateurs NEco des fragments obtenus à l'issue de la seconde itération. Spécificité - Comme décrit pour la banque précédente, le produit issu de la deuxième itération de la méthode CDA est marqué et utilisé comme sonde pour un panel de souches de Neisseria. La figure 1A illustre l'hybridation Southern blot des produits de la seconde itération de la méthode CDA avec 1'ADN digéré par ClaI de : Nm en piste a, de Ng MSll en piste b, de Nm 8013 en piste c, de Ng 403 en piste d, de Nm 1121 en piste e, de Ng 6934 en piste f, de Nm 1912 en piste g, de Ng WI (souche DGI) en piste h, de Nm 7972 en piste i, de Ml 8064 en piste j, de Nc 32165 en piste k, de Nm 8216 en piste 1. Contrairement à la forte réactivité observée avec toutes les souches Nm, une faible, ou aucune réactivité, est observée avec les souches Ng, Ml et Nc. La spécifité de la banque a été étudiée plus avant en faisant réagir des transferts sur membrane (Southern blots) des produits issus de chacune des trois itérations de la méthode CDA avec des sondes correspondant à pilC1 et ppk. Ces deux gènes sont communs à Nm et Ng. La figure 1B représente un gel d'agarose après électrophorèse des chromosomes de Nm Z2491 et Ng Msll, digérés avec Tsp509 et des produits issus de chacune des itérations de la méthode CDA. En piste a, a été déposé 1 ug du chromosome de Nm, en piste b 1 pg de celui de Ng, en piste c 0,15 pg des produits issus de la première itération CDA, en piste d 0,1 ug de ceux de la seconde itération, en piste e 0,05 g de la troisième itération, MW représentant les marqueurs de taille moléculaire. Les figures 1C et 1D représentent des gels réalisés comme décrits en figure 1B après transfert sur membrane (Southern blots) et hybridation avec pile1 (figure 1C) et ppk (figure 1D). A l'issue de la seconde intération de la méthode CDA, les séquences correspondant aux gènes pile1 et ppk sont complètement exclues de la banque. Exhaustivité - L'exhaustivité de la banque a été examinée en faisant réagir les produits issus de l'hybridation soustractive avec des sondes correspondant à trois gènes Nm-spécifiques (frp, rotamase et opc). Ces sondes Nm-spécifiques réagissent avec les produits d'amplification issus de la première et de la seconde itération d'hybridation soustractive. Les figures lE, 1F et 1G représentent des gels réalisés comme décrits en figure 1B après transfert sur membrane (Southern blots) et hybridation avec frpA (figure 1E), rotamase (figure 1F) et opc (figure 1G). Une troisième itération d'hybridation soustractive conduit cependant à la perte de séquences Nm-spécifiques car les fragments réagissant avec les gènes rotamase et opc sont absents de cette troisième itération. En considérant l'ensemble de ces données, il résulte que les produits issus de la seconde itération de la méthode CDA sont Nm-spécifiques et constituent également une banque exhaustive des séquences Nm-spécifiques. Les produits issus de cette deuxième itération sont clonés au niveau du site EcoRI du plasmide pBluescript. La banque produite par Tsp509I est plus exhautive que la banque produite par MboI, comme les considérations théoriques basées sur la production enzymatique de plus petits fragments de restriction le supposaient. Selon cet aspect, il faut aussi noter que la banque Tsp509I est moins redondante que la banque MboI c'est-àdire qu'elle comprend moins de duplication de clones. 86% des clones de la banque Tsp509I correspondent à des séquences distinctes alors que seulement 43% des clones correspondent à des séquences distinctes dans la banque MboI (données non présentées). La banque produite par Tsp509I constitue donc une source de clones Nm-spécifiques. Exemple 2 : Analyse des clones des banques soustractives Clonage et séquençage des ADN Nm-spécifiques Les ADN des banques soustractives sont clonés au niveau du site BamHI (banque MboI) ou EcoRI (banque Tsp509I) du plasmide pBluescript, puis transformés dans DHSa de E. coli. Les inserts sont amplifiés par PCR réalisée sur les colonies transformées en utilisant les amorces Ml 3-50 et M13-40, cette dernière amorce étant biotinylée à son extrémité 5'. Le séquençage a été réalisé sur chaque produit PCR après séparation des brins biotinylés et non-biotinylés en utilisant le système Dynabeads M-280 à streptavidine (Dynal, Oslo). Les séquences sont criblées selon leurs homologies avec des séquences précédemment publiées en utilisant les programmes informatiques Blastn et Blastx (NCBI, USA et Fasta). Les produits PCR issus des colonies de bactéries transformées, après utilisation des amorces M13-40 et M13-50 comme décrit ci-dessus, ont été marqués par incorporation avec amorçage aléatoire de a - 32P-dCTP et ont été utilisés comme sonde pour les transferts sur membrane de l'ADN chromosomique digéré par ClaI des souches Nm Z2491 et Ng MS11, comme décrit ci-dessus afin de vérifier leur spécificité. Cartographie des clones sur le chromosome de la souche Nm Z2491. On rapporte les résultats des études effectuées avec 17 clones de la banque "MboI" (désignés par la lettre B) et 16 clones de la banque " Tsp5091" (désignés par la lettre E), chacun de ces clones présentant une séquence unique et sans contrepartie chez Ng. Les positions des séquences d'ADN correspondant aux produits Nm-spécifiques clonés ont été déterminées par rapport à la carte publiée du chromosome de Nm Z2491 (Dempsey et al. 1995, J. Bacteriol. 177, 6390-6400) et à l'aide de transferts sur membranes (Southern blots) de gels d'agarose ayant été soumis à électrophorèse à champ pulsé (PFGE). Les clones Nm-spécifiques sont utilisés comme sondes pour une hybridation sur membranes (Southern blots) de l'ADN de Nm Z2491 digéré avec des enzymes à rares sites de coupure, à savoir PacI, PmeI, SgfI, BglII, SpeI NheI que SgfI. Les gels (20 x 20 cm) étaient des gels à 1% d'agarose dans un tampon TBE 0,5X et ont été soumis à électrophorèse à 6 V/cm pendant 36 heures selon des périodes de pulsation variant de manière linéaire entre 5 et 35 secondes. Les hybridations sur membrane (Southern blots) ont été réalisés comme décrit précédemment. Les résultats obtenus sont rapportés sur la figure 2 : la réactivité a été localisée par comparaison avec les positions des fragments de taille correspondante sur la carte publiée. Les positions de l'ensemble des marqueurs génétiques cartographiés par Dempsey et al (précédemment cité) sont visualisées à l'aide de points sur la carte linéaire chromosomique. Les gènes Nm-spécifiques précédemment divulgués sont marqués d'un astérisque. Les deux loci appelés "frp" correspondent aux gènes frpA et frpC. Les locis "pilC" correspondent aux gènes pile1 et pilC2 qui sont des paires de gènes homologues et qui ne sont pas distingués sur la carte. La précision des positions des clones Nm-spécifiques de l'invention dépend des chevauchements des fragments de restriction réactifs. En moyenne, la position est de +/- 20 kb. Cette cartographie révèle une distribution non aléatoire des séquences Nm-spécifiques. La majorité des séquences Nm-spécifiques appartiennent à trois groupes distincts. Un de ces groupes (région 1) correspond à la position de gènes relatifs à la capsule précédemment décrits. On distingue - E109, E138, B230 et B323 comme étant la région 1, - B322, B220, B108, B132, B233, B328, E139, E145 et B101 comme étant la région 2, et - B306, E114, E115, E124, E146, E120, E107, E137 et E142 comme étant la région 3. 63% des séquences identifiées comme spécifiques des méningocoques sont localisées à l'intérieur de ces trois régions distinctes. Ce regroupement contraste avec la distribution de gènes Nm-spécifiques précédemment divulgués (frpA, frpC porA, opc et la région relative à la capsule). Cet art antérieur suggérait en effet que les gènes Nm-spécifiques étaient à l'exception des gènes fonctionnellement relatifs à la capsule, dispersés le long du chromosome. La cartographie des séquences Nm-spécifiques sur le chromosome conduit à un résultat inattendu en regard de l'art antérieur. La majorité des différences génétiques entre les souches meningoccale et gonococcale testées sont regroupées en trois régions distinctes. La région 1 regroupe des gènes relatifs à la capsule des meningococci. La fonction des gènes des autres régions n'est pas connue mais des homologies avec des séquences publiées (tableau 1) suggèrent des similarités entre certains gènes de la région 3 et les protéines transposases et de régulation de bactériophages. Aucun virus meningococcal n'a été caractérisé et il est tentant d'imaginer que ces séquences soient d'origine phagique. De manière intéressante, le génome de H. influenza contient également une séquence homologue à celle de la protéine de régulation Ner du phage Mu mais on ne sait pas s'il s'agit d'un gène fonctionnel. Le clone B208 présente une forte homologie (48% d'identité, 91% d'homologie pour 33 acides aminés) avec un clone des régions conservées (domaine III) dans la classe des protéines qui se lient aux sidérophores ferriques TonB-dépendants. La proximité de ce clone avec les gènes Nmspécifiques porA et les gènes régulés par le fer frp, et en particulier la possibilité qu'il s'agisse d'une protéine récepteur Nm-spécifique exposée sur la membrane externe font de lui un bon candidat pour de plus amples recherches. Le clone B339 correspond à la séquence d'insertion Nm-spécifique IS1106. La faible homologie entre le clone B134 et la séquence d'insertion d'Aeromonas, ainsi que la présence en copies multiples du clone B134 parmi des souches variées de Nm, suggèrent qu'il pourrait représenter un nouveau type de séquence d'insertion Nm-spécifique. La possibilité pour que les régions contenant les clones Nm-spécifiques puissent correspondre à des îlots de pathogénicité comme précédemment décrit pour E. coli et Y. pestis est d'un intérêt particulier. Les clones isolés dans cette invention vont permettre de mieux comprendre la pertinence des régions Nm-spécifiques en permettant le clonage et le séquençage de fragments chromosomiques plus grands et directement par leur utilisation pour des mutations de loci. Enfin, la détection des gènes meningococcusspécifiques, éventuellement impliqués dans la pathogénicité de l'organisme, permet de cibler des antigènes appropriés utilisables dans un vaccin antimeningococcique. L'efficacité et la rapidité de la méthode selon l'invention permettent son utilisation dans un grand nombre de situations pour lesquelles les différences génétiques responsables d'un phénotype particulier à un de 2 pathogènes proches sont recherchées. Etude de la réactivité des clones des régions 1, 2 et 3 vis-à-vis d'un panel de souches de Neisseria Les produits PCR correspondant aux inserts de chacun des clones ont été rassemblés et utilisés comme sondes d'hybridation sur membranes (Southern blots) pour un panel de souches de Nm, de Ng, de Ml et de Nc. Les régions 1 et 2 produisent un nombre limité de bandes pour chacun des méningocoques. Cela suggère que ces régions sont à la fois Nm-spécifiques et communes à tous les méningocoques. La figure 3 illustre la réactivité des clones des régions 1, 2 et 3 envers un panel de souches neisseriales. Les clones des régions 1 (figure 3A), 2 (figure 3B) et 3 (figure 3C) pris ensemble ont été utilisés comme sondes envers un panel de meningococci, gonococci et envers une souche de Ml et de Nc. Les pistes sont les suivantes : ADN de Nm Z2491 en piste a, de Ng MS11 en piste b, de Nm 8013, en piste c, de Ng 403 en piste d, de Nm 1121 en piste e, de Ng 6934 en piste f, de Nm 1912 en piste g, de Ng WI (souche DGI) en piste h, de Nm 7972 en piste i, de Ml 8064 en piste j, de Nc 32165 en piste k, de Nm 8216 en piste 1. De manière remarquable, la région 3 ne présente de réactivité qu'avec les meningococci de sérogroupe A. Cette région 3 est donc spécifique d'un sous-groupe de Mm. Une comparaison avec des séquences connues dans les banques de données a été réalisée afin d'évaluer les possibles fonctions des régions clonées. Le tableau qui suit donne les positions des clones spécifiques sur la carte chromosomique et les homologies avec des séquences connues. TABLEAU - Position des clones spécifiques sur la carte chromosomique et homologies avec des séquences connues. Fragments réactifs Nom du Taille de Position sur Homologies des Clone* l'insert Pac Pme Bgl Spe Nhe Sgf Z2491 séquences protéiques B305 259 18-20 15-17 22-23 18 11-13 2 #736 B333 235 15-17 22-23 18 11-13 2 #736 E109@@ 211 6-7 11-15 10 11-13 2 tu#A/ctrA protéine LipB N. meningitidis (3x10-26) E138@@ 315 1 6-7 11-15 10 11-13 2 tu#A/ctrA protéine LipB N. meningitidis (4x10-75) B2301 356 1-3 6-7 1 10 11-13 2 ctrA protéine KpsC E. coli (3x10-53) B3231 363 1 6-7 1 10 11-13 2 ctrA protéine CtrB N. meningitidis (2x10-64) B3222 210 2 16-18 6 1 5 pilQ/#740 HlyB S. marcescens (4x10-15) B2202 341 2 16-18 6 #18 5 pilQ/#740 B1082 275 2 19-21 6 #18 5 pilQ/#740 B1322 411 2 2 19-21 6 #18 5 pilQ/#740 B2332 164 1-3 2 19-21 6 #18 5 pilQ/#740 B3282 256 1-3 2 22-23 6 #18 5 pilQ/#740 E1392 324 2 2 19-21 6 #18 5 pilQ/#740 E1452 343 2 2 19-21 6 #18 5 pilQ/#740 B1012 254 #20 2 19-21 6 #18 5 pilQ/#740 E103q 334 2 11-15 3-5 10 3 #644 B326# 314 2 11-15 3-4 10 3 #644 B326 (faible réactivite) 5 6 16 2 1 argF B342 167 2 19 3-4 6-7 3 iga E136 249 2 7 1 3 3 lepA B208 177 1 2 3-4 2 1 porA récepteur de la pyocheline FeIII P.aeruginosa (5.10-4) B3063# 219 11 5 11-12 5 2 4 parC B1143 227 11 5 11-12 5 2 4 parC E1153# 251 5 11-15 5 2 4 parC E1243 208 5 11-12 5 2 4 parC E1463 146 5 11-15 5 4 parC E1203 263 5 3-4 5 16 4 opaB E1073 248 11 14-17 3-4 5 16 4 opaB E1373 274 14-17 3-4 5 16 4 opaB Transposase. Bacteriophage D3112 (6x10-12) E1423 230 14-17 3-4 5 16 4 opaB Protéine Ner-like. H. influenzae (6x10-23) Protéine se liant à l'ADN Ner, Phage mu (3x10-18) E116 379 5-7 11-13 3-4 2 6-7 8 #375 B313 436 9 9 3-4 13-14 5 2 #611 B341 201 8-10 9 3-4 13-14 5 2 #611 E102 238 11-13 3-4 19 5 2 #601 Protéine hypothétique HI1730 H. influenzae (7x10-24) B134 428 multiple transposase ISAS2, Aeromonas Salmonicida (5 x 10-5) B339 259 multiple transposase IS1106 N. meningitidis (6x10-45) Entre parenthèse figure la signification des homologies trouvées, telle que donnée par le programme Blastx *) Les clones marqués de l'exposant "1", "2" ou "3" appartiennent aux régions "1", "2" ou "3" respectivement du chromosome de N. meningitidis Z2491 +) E109 et E138 sont des clones contigus #) B306 et E115 se chevauchent #) B236 présente également une faible réactivité dans la région de arg F q) Le clone E103 contient un site Tsp509 I et peut donc contenir deux inserts, cependant, comme il ne réagit qu'avec un seul fragment Clal (Oks) du chromosome de N. meningitidis Z2491 et n'occupe qu'une position sur la carte, ce clone est inclus ici. On peut voir, tout d'abord, que les clones de la région 1 correspondent tous aux gènes impliqués dans la biosynthèse de la capsule. Ces gènes ont été précédemment étudiés parmi les Nm de sérogroupe B (Frosch et al. 1989, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 86, 1669-1673 et Frosch et Muller 1993, Mol. Microbiol. 8 483-493). A l'exception d'une faible homologie avec l'activateur de hémolysine de Serratia marcescens, les clones de la région 2 ne présentent aucune homologie significative avec les séquences publiées, que ce soit au niveau de l'ADN ou des protéines. Deux des clones de la région 3 présentent d'intéressantes homologies avec des protéines qui se lient à l'ADM, en particulier les protéines de régulation et les protéines transposases de bacteriophages. Le clone B208 présente une forte homologie avec une des régions conservées dans une classe de récepteurs (sidérophore ferrique TonB-dependant). Les clones B134 et B339 s'hybrident avec de nombreuses régions du chromosome (au moins 5 et au moins 8, respectivement). Les données concernant les séquences montrent que le clone B339 correspond à la séquence d'insertion Nmspécifique S1106. La traduction du clone B143 présente une homologie limitée avec la transposase d'une séquence d'insertion Exemple 3 : Mise en évidence de la présence d'une ou plusieurs souches de Neisseria meningitidis dans un échantillon biologique. Un échantillon biologique de type liquide céphalorachidien, urine, sang, salive est prélevé. Après filtration et extraction, les ADN présents dans cet échantillon sont soumis à électrophorèse sur gel et transférés sur membrane par Southern blotting. Une sonde nucléotidigue constituée par le marquage au 32p de la SEQ ID n 5 est incubée avec cette membrane de transfert. Après antoradiographie, la présence de bande(s) réactive(s) permet de diagnostiquer la présence de Neisseria meningitidis dans l'échantillon. Exemple 4 : Composition vaccinale incluant dans son spectre une prophylaxie à visée anti-méningococcique et destinée à prévenir toute forme d'infection par Neisseria meningitidis. Le polypeptide encodé par la SEQ ID n010 est conjugué à une toxine. Ce polypeptide conjugué est alors ajouté à une composition comportant le vaccin anti-Haemophilus et anti-pneumocoque, ou tout autre vaccin de l'enfance. La composition résultante peut, après avoir été rendue stérile, être injectée par voie parentérale, souscutanée ou intramusculaire. Cette même composition peut également être pulvérisée au niveau des muqueuses à l'aide d'un spray. LISTE DE SEQUENCES (1) INFORMATIONS GENERS: (i) DEPOSANT: (A) NOM: I.N.S.E.R.M (B) RUE: 101, rue de Tolbiac (C) VILLE: PARIS CEDEX 13 (E) PAYS: FRANCE (F) CODE POSTAL: 75654 (ii) TITRE DE L' INVENTION: ADN spécifiques des bactéries de l'espèce Neisseria meningitidis, leurs procédés d'obtention et leurs applications biologiques. (iii) NOMBRE DE SEQUENCES: 35 (iv) FORME DECHIFFRABLE PAR ORDINATEUR: (A) TYPE DE SUPPORT: Floppy disk (B) ORDINATEUR: IBM PC compatible (C) SYSTEME D' EXPLOITATION: PC-DOS/MS-DOS (D) LOGICIEL: PatentIn Release &num;1.0, Version &num;1.30 (OEB) (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 1: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 257 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Neisseria meningitidis (B) SOUCHE: Z2491 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 1: GATCCGCTGC CGGCAGACGA ATATCAAGAC ATCTTCGATT TTATGAAACA GTATGACTTG 60 TCTTACCCGT ATGAATATCT GCAGGATTGG ATACATTACT ATACGTTCAA AACCGATAAG 120 CTGGTATTTG GTAACGCGAA GCGAGAGTGA GCCGTAAAAC TCTGAGCTCC TGTTTTATAG 180 ATTACAACTT TAGGCCGTCT TAAAGCTGAA AGATTTTCGA AAGCTATAAA TTGAAGCCCT 240 TCCACAGTAC ATAGATC 257 (2) INFORMATIONS POUR Lk SEQ ID NO: 2: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 276 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Neisseria meningitidis (B) SOUCHE: Z2491 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 2: GATCATGTTC AAATAGATAG GCATGGGAAG CTGCAGCTCT AACGTCCATG AAAATATGTT 60 GCATAGCTGC AAGCGGAACG CCTTTTCTTT CATCTACATA ATCTATAGAG TCAAGGCAAC 120 CGCTATTGAA ATTAGCAGTA TTGCCTATGA TTACATTAGT AATATGCTCA TACCATTTTT 180 GGGTGGTCAT CATATTGTGC CCCATTGTTA TCTCCTTATA TTGGTTTTAG AAGGAACTTT 240 GACAGGAAGA ATAACGGCCT TACCTGTTTG ACGATC 276 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 3: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 428 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Neisseria meningitidis (B) SOUCHE: Z2491 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 3: GATCTGGTGG TGTTTGCACA GGTAGGCGCA TACTTGTTCG GGACTGAGTT TGCGGCGGAT 60 AAGGGTGTCG ATGTGCTGAA TCAGCTGCGA ATCGAGCTTA TAGGGTTGTC GCTTACGCTG 120 TTTGATAGTC CGGCTTTGCC GCTGGGCTTT TTCGGCGCTG TATTGCTGCC CTTGGGTGCG 180 GTGCCGTCTG ATTTCGCGGC TGATGGTGCT TTTGTGGCGG TTAAGCTGTT TGGCGATTTC 240 GGTGACGGTG CAGTGGCGGG ACAGGTATTG GATGTGGTAT CGTTCGCCTT GGGTCAGTTG 300 CGTGTAGCTC ATGGCAATCT TTCTTGCAGG AAAGGCCGTA TGCTACCGCA TACTGGCCTT 360 TTTCTGTTAG GGAAAGTTGC ACTTCAAATG CGAATCCGCC GACCTCTTTC AGTTACAGCA 420 GCTTGATC 428 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 4: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 390 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Neisseria meningitidis (B) SOUCHE: Z2491 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 4: GATCCTGCAT TGACATCGGC CTTGGCTGTC AGGGTATTGT GACCGGTAAA GTCGGCATTA 60 CCGTTGGCCA ATAAGGATAC ATGACCGTCT GCAGAAACAG CATGAAGGCC GTCTGAAACG 120 ATATTGCCCT GCAATGCGGT GGTTTCGAGA GCCTTGGCTG CGTTCAGCTT GGTATTGCGA 180 AGCTGAATAT TGCCTTTGGC TGCCTGAATG TGCAGATTAC CCGAGTTGGT ACGCAGATTG 240 GTATTGGTAA CATTCAGCAA GCCTGCCTCC ACACCCATGT CTTTTGAGGC AGTGAGGGTT 300 TTACTGGTGC CGGTAATATG GGCAGCGTTA TCCGATTTCA AATGGATGCT GGCCGGCAGA 360 CAAATCTTTA TCAACATTCA AATTCAGATC 390 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 5: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 177 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Neisseria meningitidis (B) SOUCHE: Z2491 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 5: GATCAGATTG GTGAAGACGG TATTACCGTC AATGTTGCAG GCCGTTCGGG ATATACGGCG 60 AhAATCGACG TGTCTCCGAG TACCGATTTG GCGGTTTATG GCCATATTGA AGTTGTACGG 120 GGTGCAACGG GGTTGACCCA ATCCAATTCA GAGCCGGGTG GAACCGTCAA TTTGATC 177 (2) INFORMTIONS POUR LA SEC ID NO: 6: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 341 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Neisseria meningitidis (B) SOUCHE: Z2491 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 6: GATCAATGAT GCTACTATTC AAGCGGGCAG TTCCGTGTAC AGCTCCACCA AAGGCGATAC 60 TGAATTGGGT GAAAATACCC GTATTATTGC TGAAAACGTA ACCGTATTAT CTAACGGTAG 120 TATTGGCAGT GCTGCTGTAA TTGAGGCTAA AGACACTGCA CACATTGAAT CGGGCAAACC 180 GCTTTCTTTA GAAACCTCGA CCGTTGCCTC CAACATCCGT TTGAACAACG GTAACATTAA 240 AGGCGGAAAG CAGCTTGCTT TACTGGCAGA CGATAACATT ACTGCCAAAA CTACCAATCT 300 GAATACTCCC GGCAATCTGT ATGTTCATAC AGGTAAAGAT C 341 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 7: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 164 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Neisseria meningitidis (B) SOUCHE: Z2491 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 7: GATCCAACTG TTTGATTTTA CTGGCTGCTT CTCCATGCGC GGTATTGACC AAAGCCGCAA 60 GGATATTCGC TTCCAGATTG TCTTTCAGGC TGCCGCCGTT GACAGCGGTA TTAATCAGTG 20 CGGCACTGCC CGCATTGGCT AGGTTGACGG TCAGGTTGTT GATC 164 (2) INFORMaTIONS POUR LA SEQ ID NO: 8: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 219 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Neisseria meningitidis (B) SOUCHE: Z2491 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 8: GATCAATCAC ACATCTTGTC ATTTTTTCGA TTCCTTCATT TCGGTTTCTA ATGTTTCAAT 60 TCTTGCGGCC ATTTCCTGAA TGGCTTTAGT CAAAACGGGG ATGAACGCTT CGTATTCGAC 120 GGTGTAGGTA TCGTTTGTTT TATTTACCAT CGGCAATCGA CCATATTCAT CTTCCAGCGC 180 AGCAATGTCC TGGGCAATAA ACCAATGCCG CAACCGATC 219 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 9: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 356 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Neisseria meningitidis (B) SOUCHE: Z2491 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 9: GATCTTGGGT AAGCCCCCAA CCTGCATAGA AAGGCAGGCC GTAGCAGCTG ACTTTTTTGC 60 CGCGCAACAA GGCTTCAAAA CCGGTCAGCG AAGTCATGGT ATGTATTTCG TCTGCGTATT 120 GGAGACAGGT CAGGATGTCG GCTTGTTCGG CGGTTTGGTC GGCATATCGT GCAGCATCAT 180 CAGGGGAAAT ATGGCCGATG CGGTTACCGC TGACTACATC GGGATGCGGT TTGTAGATGA 240 TATAGGCATT GGGGTTTCGT TCGCGTACGG TACGGAGCAA ATCCAGATTG CGGTAGATTT 300 GGGGCGAACC GTAGCGGATA GACGCATCAT CTTCAACCTG GCCGGGAACG AGGATC 356 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 10: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 210 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Neisseria meningitidis (B) SOUCHE: Z2491 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 10: GATCCGCTTT CAGTTTCCGT ACCGGTGGCA TCAGTCAAGT CCGTTTTGTG CACCAAACCG 60 CGTCCATATG AAACATAAAA CAAATCGCTT AAGCCCAAAG GGTTATCGAA CGATAAAGCG 120 ACATTTCCTT GATATTTGCC GGTCGTTTTG CCGCCCGCAT CATCTATACC GATACTGAAC 180 CGTATGGGTT TATTCTGCTG CCATTTGATC 210 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 11: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 259 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Neisseria meningitidis (B) SOUCHE: Z2491 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 11: GATCCCGAAA CGCAATTGGT CGAAAGCTAT ATGCTGAACG ATGTGTTGCG GTTTTGGGAC 60 AGCGCAGGTT TGGGCGATGG GAAAGAAGCC GACCGCGCCC ATCGGCAAAA ACTGATTGAT 120 GTCCTGTCTA AAACCTATAC TCATTCGGAT GGGCAGTGGG GCTGGATAGA TTTGGTGTTC 180 GTTATCCTTG ACGGCAGCTC CCGCGATTTG GGTACGGCCT ATGATTTGTT GAGGGATGTT 240 ATCCTTAAAA TGATTGATC 259 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 12: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 436 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Neisseria meningitidis (B) SOUCHE: Z2491 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 12: GATCAAATGG ATGATTTATA TAGAATTTTC TTTTACGACT GCGTGCCGTT TGAAAAGAAA 60 ATGCACAATC CCGTATCTCA TCGTGCCATA GATTTTTCAA AGACTCCGGA AGCCATATTT 120 CGTTGCAATC TGCATACCGA ATTGAAGAAG AAGCGTAAAT TAGCGTTACG TTTAGGCAAG 180 CTGTCGGACA ATACAGCATG GATATTAAAA CCCCAAGTCA TGAAAAATCT TCTGAAAAAC 240 CCGTCAACTC AAATTACGGA AAACGATGTC GTGCTCGATG TTAAACAAAA AGGTGTAGAT 300 ATGCGTATAG GCTTGGATAT TTCATCTATT ACCTTAXAAA AACAAGCCGA TAAAATCATC 360 TTGTTTTCTG GTGATTCCGA TTTTGTCCCA GCAGCCAAAT TAGCCAGACG GGAAGGTATC 420 GATTTTATTC TTGATC 436 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 13: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 363 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Neisseria meningitidis (B) SOUCHE: Z2491 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 13: GATCGTTTTA CGTCGCAATC GAGCTTTGTG GTGCGCTCGC CTAAAAGCCA ATCTTCTCTC 60 AATGGCCTGG GTGCCATTTT GCAGGGCACA GGTTTTGCCC GTGCGCAAGA CGATATTTAT 120 ACCGTGCAGG AATATATGCA GTCGCGTTCG GCTTTGGATG CGTTGCGTAA GA:AATGCCC 180 ATTCGCGATT TTTATGAAAA AGAAGGCGAT ATTTTCAGCC GTTTTAATGG TTTTGGCCTG 240 CGTGGCGAGG ATGAGGCGTT TTATCAATAC TACCGTGATA AGGTATCCAT CCATTTTGAC 300 TCTGTCTCAG GCATTTCCAA TTTGAGCGTT ACATCGTTTA ATGCCGGTGA ATCTCAAAAG 360 ATC 363 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 14: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 314 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Neisseria meningitidis (B) SOUCHE: Z2491 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 14: GATCTTGCGT CATTTATATC TTCACCGATA TTGCAATTAC CGCCGTTCCA GTTGAAATAA 60 CAACGACTAA AATTGTAGTT CCTAAAAGAA TCATTCCTAT TCTTGCGTAC CATTTCCCAA 120 TAATTGCGCC CGACAATTTC CATTTAATGC TCCATCAGTT CTTTTACTTC CGGAAATCTG 180 CTGTAATCTG ACATAAGACG CATAATTGAA CTATCAACGC CGTAACAGCC ATAGGTTTTA 240 ATACCGTTTT CGGCGTGTTC CCAAATGCAA TTACTGTATT CGTAGCCTTT TACAAATTTA 300 TCGGTTTCGG GATC 314 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 15: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 256 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Neisseria meningitidis (B) SOUCHE: Z2491 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 15: GATCATACGA ATCTACCCTA AAATACCCCG TCGCCGATTT AGGATTGGCT ACATARAGOT 60 CATTATAAGG GTATTTTGAT GACATGATAC GGTTAAATTC ATTGCCGTTG TTTATCCTGA 120 TTCTATAAAT TGGTTCAACA GCAAAGCCTC TGGATTCCCT TAATTGATTA TAATATTGCC 180 TGTATGTTTG TACATCATGT CTTGTCCACG GCTCTCCAGG AGTCCTCAGA ATAGCAATCC 240 CGTTAAATTT CGGATC 256 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 16: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 235 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Neisseria meningitidis (B) SOUCHE: Z2491 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 16: GATCCACGCC TGTGCCTACC TTGGCTTTTT GTTCGCCAAA CAAGGCATTT AAGGTTGAGG 60 ACTTGCCGAC ACCTGTCGCA CCGACAAGCA AGACATCCAA ATGACGGAAA CCGGCTGCTG 120 TGACTTTTTG CCCGATTTCA GAAATACGGT AACGATGCAT ATGCGCTCCT ACCAGCCAAA 180 AAAAGAAGCA ACCGTGCTAA TCGCCCCTCC AATCGCTTTT GCAGCACCGC CGATC 235 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 17: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 259 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Neisseria meningitidis (B) SOUCHE: Z2491 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 17: GATCCAACGG GCATCGCTGT CCTTACTCGG TGTGGTTTGA CCGCTGATTT GTCCTTCTTC 60 GTCAACTTCT ATGGCCTGAC GCTGTTTGCT GCCGGCGGTC TGGATAATGG TGGCATCAAC 120 GACGGCGGCG GATGCTTTCT CTATTTTTAG GCCTTTTTCG GTCAGTTGGC AGTTAATCAG 180 TTTGAGTAAT TCGGACAGGG TGTCGTCTTG CGCCAGCCAG TTGCGGTAGC GGCATAAGGT 240 ACTGTAATCG GGGATGATC 259 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 18: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 201 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Neisseria meningitidis (B) SOUCHE: Z2491 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 18: GATCTGTGCC GTTGATTTTA TCTTTCAGAT GCAGCATCGA ATATCGGAAA GCCAAATCAG 60 CAATTCTTTT TGCATCGTGT GGATTTTGAG ACGGGCCTAA TGACCGTACC CGCTTAATAA 120 AAAATGCACC GTCAATCAAA ATGGCGGTTT TCATATTGCT TCCCCTATAT TTGTCAAAGA 180 TATAAAAAAG CCCTTGGGAT C 201 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 19: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 334 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Neisseria meningitidis (B) SOUCHE: Z2491 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 19: AATTCAAAGG AGGCATTTGT TGCAAGAAAA GTACAAAGTG ATTTGCAAAA AGCATTGAAT 60 GCTAGCAACT ATAACAAGCA GCAATATGCA AGACGTGCGG CAACAGCGTT AGAGAATGCT 120 TCAAAATCAA AAGTTATGGC AGCGAATTCT TTTTGATCTA TCTTGTGCGA ACGGGTCAAA 180 TATTCTTCGT ACATTGAGTT AATCGTACCA ATCGCCCTAA CCACATTTTC ATCAGAAAAT 240 ATGGAAATAA TAGCATCCCT ATACGCACCT AGTGTAATAT TGTTTCTATT ATTAGTTATA 300 GCATTATTCG AATACATAAT AGCACCTCCA AATT 334 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 20: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 238 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Neisseria meningitidis (B) SOUCHE: Z2491 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 20: AATTCCTGCG CACCTTTGCC GATGGGGAGA TAATCGCCTT TTTGCAGCAT TCTGCCCTGA 60 TGGCCGCCGA AACCGGCTTT CAGGTCGGTA CTTCTCGAAC CCATCACTTC CGGCACATCA 120 AATCCGCCCG CCACGCACAC ATAGCCGTAC ATGCCCTGCA CGGCACGCAC CAGTTTCAAG 180 GTCTGCCCTT TGCGGGCGGT ATAACGCCAA TACGAATAGA CCGGTTCGCC GTCCAATT 238 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 21: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 249 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Neisseria meningitidis (B) SOUCHE: Z2491 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 21: AATTGGGCGA GATGCTGCCG GAAACGGATT TAAAACAGAT TGCGGCGGCA GTGTTGAAGA 60 CGAACGATGA GGCGGCATTG CAGAAGGTGG TGARAACGGC CAAAGGCAAT GCGCGGAAAC 120 TGTCGAAGCT GCTGCTGATT GTGGACTATT TGTTGCAGGT TAACCCTGAT GTTGATTTGG 180 ATGATGATGT AATCGAACAC GCGGAAACCT ATTTAATCCA CTAAACCTTT GACAGATAAG 240 GCAATAATT 249 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 22: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 212 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Neisseria meningitidis (B) SOUCHE: Z2491 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 22: AATTTATGTA CGGTTTTGCC GTTTGCAGTC AGCCAGTCGG CAAGGCGCAG AAAAAAATCG 60 CCGACAGGGC CTTGAAGCAG CAGGATATTT TCTGCGCTTT CAAGCAGGTT TTGCAGGTTA 120 TTTTTGAGGA CGGTCTGTTT CATGTTGCAA TGTGGTTTTG TTTTTTATGT AATAGTTTTA 180 GGTTGAACTT TCAAGCATAC GCCAAGAGAA TT 212 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 23: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 227 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Neisseria meningitidis (B) SOUCHE: Z2491 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 23: AATTCAGTGC CTGCGTCATA TCACGGCTAC CTTGTGGTTC AGGGTTACTG TATCGCCCGC 60 GGCATCGACG GCTTCAATAT GCAGCTTCAG CCAGCCC1TGC TGCGGGGCGG ATGCGGTTAC 120 TTGGATGGAT TGGGCGCGTT TGGACTGAAT CACGGGCTGC AAGGCTTGCT CGGCGTACTG 180 TTTGGCCAGT ACTTCGATGC GCTTTAAATG CTTTTGGCGG CGCAATT 227 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 24: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 167 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Neisseria meningitidis (B) SOUCHE: Z2491 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 24: GATCCAGGAC TCAhAAACCG ATTTCCTAAT AGAGTGTCTA ATATCCCAAT CTTTTTTACC 60 CCCTCTGCTG TAGAATTGAT AGAGAAAGTT TGTCTATCTT TTTCATATAC CCATGCCTTC 120 TTTTTATCAT TGTAGCTAAC ATAACCGCCA AACAATGCTT CTAGATC 167 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 25: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 251 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Neisseria meningitidis (B) SOUCHE: Z2491 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 25: AATTCTTGCG GCCATTTCCT GAATGGCTTT AGTCAAAACG GGGATGAACG TTTCGTATTC 60 GACGGTGTAG GTATCGTTTG TTTTATTTAC CATCGGCAAT CGACCATATT CATCTTCCAG 120 CGCAGCAATG TCCTGGGCAA TAAACCAATG CCGCAACCGA TCTTCTTTAT GACTGCCGTC 180 CTTGATTGGA TTCGCCCACC ATTCGCGGAC TTTGTCCGCT CGTTCATCTG CCGGCAAGTC 240 TTTGAATAAT T 251 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 26: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 207 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Neisseria meningitidis (B) SOUCHE: Z2491 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 26: AATTCCCGAC TATCGCGGAT GCGTAGTTTT TGCCGGTGGG CAAGAGCAGG TGTGGGATAA 60 GTTAGGTGAT TTGCCCGATG GCGTCAGCCT GACCCCGCCT GAATCGGTAA ATATTGACGG 120 CTTAAAATCC GTAAAACTCG TCGCATTAAA TGCTGCCGCT CAGGCTTTTA TTAACAAGCA 180 CGCCGGTATC GACAGCGTAC CTGAATT 207 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 27: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 379 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Neisseria meningitidis (B) SOUCHE: Z2491 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 27: AATTGTTTGG GAATAATCCA AACAAACAGC ATCAGGATAG CGGCGGCGGT CAGGCTGCCT 60 GAAAGGATTT TGCCGGGGTT TTTTGTAGGC AAAGCGGACG AGAAACCAAA GCAACAGCAG 120 CATGGTGTCC CAATAGCCGA TTGAGAATAG GATGGCCAAA CCTTCTAGGA AATGGCGTAA 180 ATCGTTTGTG GTAACCATGG GTAGTTCCTG TGGTTAAATG TGCAGGCTGC TTTTTGCCGA 240 ACCTTGCCGC ATCTCAAAAG CAGCCTGCGC TTCAGCGTTG CGTTACGCAG TAAAATAATG 300 AATATTTGTA ACGGCTTGGG TATTTTTTGT CAATATTCCC GCCCTTCCCT TAACAGCTGC 360 CGCGCTTTCC GTTAAAATT 379 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 28: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 274 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Neisseria meningitidis (B) SOUCHE: Z2491 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 28: AATTCGCCGA AATCAGGCTG CTGCTCGATA ATCGGCGCGG CCGATTGGCG TTGTGCCTCG 60 ATTAAATCCA TCTTGTCTTG CAGACGTTTG GCCTGGCCTT TGCGGCGGCG TTCGGCCAGT 120 TGTTCCATCC GCGTTTCCGC AAATGCCGCC CGTTTGTTGC CGTTGAATAC CGCTTTGCAA 180 ATCACCTTGC CCTGCATATC CTTCACAATC ACATGGTCGG CATCGTGGAT GTCGTAAGCC 240 ACCCGTACCT TCTGACCGCT GTAATCCAGC AATT 274 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 29: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 263 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Neisseria meningitidis (B) SOUCHE: Z2491 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 29: AATTCCGTTC TTATTGGGCT TTTTCCATCC ATCGGGTATG CCTGAAGGGA ACGCAAACCC 60 TGCCACTTGC CCATCGCTCC ATTCCCGCAT TAGCGCGTCT GACGGCAAGT GTTCTCGCGC 120 CCAATCAAGC CACGCCTGCC GCATTGCGGC CTTGTCCTGC TGAkAACTTC GCAGTGCTTT 180 TGCAACCGGC CCATCATTAA CTTCAATCAA ATAAATCATT ATATTTGCGT TCATTTTTCC 240 TACACCTTCG CCACATCCAA ATT 263 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 30: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 316 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Neisseria meningitidis (B) SOUCHE: Z2491 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 30: AATTGTTCAA GAAAAAAGTC GGCACGGCGC GGCAACGGGG AAAATGCGTT GACGCCGTCT 60 TTTTCTAAGG TGATGTAGTA GGGGCGGAAA TAGCCTTCTT CAAACGCCCA GAAACTGGCT 120 TGGTTTTCGT TTGCAATGCG TTTTGCAATG ACGTGATAAG GGCGTGTGTC GCCAAAGCAG 180 ACAACGGCCT GGATGTGATG TTGAGTGATG TATTCTTGCA ARAACTCAGG AAAGGCGTCG 240 TAGTTGTCGT TAAAAACAAC GGTATGCGCT TGAGTGGGCG GATAAAAATA GTCGTCGCCT 300 GCATTAAAGT TGAATT 316 (2) INFORMTIONS POUR LA SEQ ID NO: 31: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 324 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Neisseria meningitidis (B) SOUCHE: Z2491 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 31: AATTCAATCA ACGGAAAACA CATCAGCATC AAAAACAACG GTGGTAATGC CGACTTAAAA 60 AACCTTAACG TCCATGCCAA AAGCGGGGCA TTGAACATTC ATTCCGACCG GGCATTGAGC 120 ATAGAAAATA CCAAGCTGGA GTCTACCCAT AATACGCATC TTAATGCACA ACACGAGCGG 180 GTAACGCTCA ACCAAGTAGA TGCCTACGCA CACCGTCATC TAAGCATTAC CGGCAGCCAG 240 ATTTGGCAAA ACGACAAACT GCCTTCTGCC AACAAGCTGG TGGCTAACGG TGTATTGGCA 300 CTCAATGCGC GCTATTCCCA AATT 324 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 32: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 230 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Neisseria meningitidis (B) SOUCHE: Z2491 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 32: AATTATGCAA AAAAACGCAA CGCCGAAAAA CTGGCACCGC GCGGATATTG TTGCTGCTTT 60 GAAAAAGAAA GGCTGGTCAC TTCGAGCACT TTCAATAGAA GCGGGGTTGT CGCCGAATAC 120 GCTTAGAAGC GCACTGGCCG CCCCTTATCT TAAGGGAGAA AGGATTATTG CCGCTGCAAT 180 CGGAGTGGAA CCGGAAGAGA TTTGGTCCGA ACGGTATGCA GATCGGAATT 230 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 33: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 249 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Neisseria meningitidis (B) SOUCHE: Z2491 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 33: AATTTAATCG GTGGAATGCC TGTTCAACCG CACCAATCCC GCTGAATACG GTTGCTAATC 60 TAATATGTGA ATCAGGTTTA AGAAAAGTTT TAGATTTCCA ACCTTGTTGA CTGGGAAAGA 120 GCAAAGTTTT TTGTAATCGA GTATCGTGTG TCTGTGCCAT TGTCGAAATA GTCATACTTA 180 TATCGTTCTG TTTATCTTAT CAATATGAAA ACTACATCGT TGATTGCCCT GACAATGCCT 240 TGGTCAATT 249 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 34: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 343 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Neisseria meningitidis (B) SOUCHE: Z2491 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 34: AATTCTTGTC CCGGAGTCCA ACGTATATTT ACCCTCCTGC GAGCTAAAAG ACTATTATTC 60 TCCACTGCCA CAGTAGCCGC ATTCACCGCC GTATTCACAT CCCCTTTAAC CAATGCCACT 120 GCGCTGCCTG CGATAATCTG CGAGTAGGCT ATGACTTTTT GGCGTTCTTG GGGTGACAGT 180 TTGCCTACAT CGCGTCCGTC CAACAGGGTT TCTCCCACCA TCTCGCCGAC TGCCGCGCCG 240 ATTGCGCCGT CCCGACATTT GCCTTTATTT GCTACCGCCG ATGCACAGCC TGCTACGGCA 300 TGGGCTATCT TGTGGGCAAT GTAGTCTTCG CTGAGATTAA ATT 343 (2) INFORMATIONS POUR LA SEQ ID NO: 35: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 184 paires de bases (B) TYPE: nucléotide (C) NOMBRE DE BRINS: simple (D) CONFIGURATION: linéaire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADN (génomique) (vi) ORIGINE: (A) ORGANISME: Neisseria meningitidis (B) SOUCHE: Z2491 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE: SEQ ID NO: 35: AATTCTTCAA ACATCGTTTC GATAATCGGG TCGGTGTACA CACTGATGCG GTCGCCCGCA 60 CGGCTTTGAC CGGCTCGGAA AATATAGGCG GTGGCTTTGC CGTCGGCGAT GTCGACGCAC 120 CAACGCCAGA TGGCGTCTTC GGTATTCAAA CAATCACCCG CACAGCTTTC ACCTGCGCGG 180 AATT 184 REVENDICATIONS 1/ ADN caractérisés en ce qu'ils sont présents chez Neisseria meningitidis(désignée ci-après par Nm) et absents chez Neisseria gonorrhoeae (désignée ci-après par Ng), à l'exception des gènes impliqués dans la biosynthèse de la capsule polysaccharidique, frpA, frpC, opc, porA, et rotamase. 2/ ADN selon la revendication 1, caractérisés en ce qu'ils comprennent une ou plusieurs séquence(s) telle(s) que présente(s) sur le chromosome de Nm Z2491 entre tufA et pilT, ou région 1 du chromosome, et/ou la ou les séquence(s) nucléotidique(s) capable(s) de s'hybrider avec la ou lesdites séquences. 3/ ADN selon la revendication 1, caractérisés en ce qu'ils comprennent une ou plusieurs séquence(s) telle(s) que présente(s) sur le chromosome de Nm Z2491 entre pilQ et Â740, ou région 2 du chromosome, et/ou la ou les séquence(s) nucléotidique(s) capable(s) de s'hybrider avec la ou lesdites séquences. 4/ ADN selon la revendication 1, caractérisés en ce qu'ils comprennent une ou plusieurs séquence(s) telle(s) que présente(s) sur le chromosome de Nm Z2491 entre argF et opaB, ou région 3 du chromosome, et/ou la ou les séquence(s) capable(s) de s'hybrider avec la ou lesdites séquences. 5/ ADN selon la revendication 2, caractérisés en ce que leur séquence correspond, pour tout ou partie, à SEQ ID nO 9, 13, 22 ou 30, et/ou à toute séquence se situant à plus ou moins 20 kb de ces SEQ ID sur le chromosome d'une souche de Nm, et/ou est capable de s'hybrider avec au moins un fragment de l'une quelconque de ces séquences. 6/ ADN selon la revendication 3, caractérisés en ce que leur séquence correspond pour, tout ou partie, à SEQ ID nO 1, 2, 4, 6, 7, 10, 15, 31 ou 34, et/ou, à toute séquence se situant à plus ou moins 20 kb de ces SEQ ID sur le chromosome d'une souche de Nm, et/ou est capable de s'hybrider avec au moins un fragment de l'une quelconque de ces séquences. 7/ ADN selon la revendication 4, caractérisés en ce que leur séquence correspond, pour tout ou partie, à SEQ ID nO 8, 21, 23, 25, 26, 28, 29, 32 ou 35, et/ou, à toute séquence se situant à plus ou moins 20 kb de ces SEQ ID sur le chromosome d'une souche de Min, et/ou est capable de s'hybrider avec au moins un fragment de l'une quelconque de ces séquences. 8/ ADN selon la revendication 1, caractérisés en ce que leur séquence correspond, pour tout ou partie, à SEQ ID nO 3, 5, 11, 12, 14, 16, 17, 18, 19, 20, 24, 27 ou 33, et/ou à toute séquence se situant à plus ou moins 20 kb de ces SEQ ID sur le chromosome d'une souche de Nm, et/ou, est capable de s'hybrider avec au moins un fragment de l'une quelconque de ces séquences. 9/ ADN selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisé en ce qu'il code pour une protéine exportée au-delà de la membrane cytoplasmique. 10/ ADN selon l'une quelconque des revendications 1 à 9, caractérisés en ce que tout ou partie de leur séquence correspond à une région conservée au sein de l'espèce Nm. 11/ ADN selon l'une quelconque des revendications 1 à 10, caractérisé en ce qu'il est inséré dans un vecteur de transfert ou d'expression tel que cosmide, plasmide ou bactériophage. 12/ Cellule hôte, plus particulièrement cellule bactérienne ou cellule de Nm, transformée par l'insertion d'au moins un ADN selon l'une quelconque des revendications 1 à 11. 13/Cellule comportant des gènes ou des fragments de gènes spécifiques de Nm, plus particulièrement cellule bactérienne, ou cellule de Nm, dont le chromosome est délété d'au moins un ADN selon l'une quelconque des revendications 1-11, en particulier d'un ADN responsable de la pathogénicité. 14/ ARN, caractérisés en ce que leur séquence correspond pour tout ou partie à la transcription d'au moins une séquence ou fragment de séquence d'ADN selon l'une quelconque des revendications 1 à 11. 15/ Acides nucléiques anti-sens, caractérisés en ce que leur séquence correspond à l'anti-sens d'au moins une séquence nucléotidique selon l'une quelconque des revendications 1-11,14, ou d'un fragment d'une telle séquence, et qu'ils portent, le cas échéant, au moins une substitution chimique telle qu'un groupe méthyle et/ou un groupe glycosyle. 16/ Polypeptides, caractérisés en ce qu'ils présentent un enchaînement d'acides aminés correspondant à tout ou partie d'une séquence telle que codée par les acides nucléiques définis dans l'une quelconque des revendications 1 à 11 ou 14, ou tel que déduit des séquences de ces acides nucléiques, avec, le cas échéant, des modifications par rapport aux séquences codées ou déduites dès lors que ces modifications n'altèrent pas les propriétés biochimiques telles qu'observées chez le polypeptide natif. 17/ Polypeptides selon la revendication 16, caractérisés en ce qu'il s'agit de tout ou partie de polypeptides exportés au-delà de la membrane cytoplasmique, plus spécialement de polypeptides correspondant à tout ou partie de ceux encodés par un ADN selon la revendication 10. 18/ Anticorps, caractérisés en ce qu'il s'agit d'anticorps polyclonaux ou monoclonaux dirigés contre au moins un épitope d'un polypeptide selon la revendication 16 ou 17, ou de fragments de ces anticorps, plus particulièrement les fragments Fv, Fab, Fab'2, ou encore d'anti-anticorps capables de reconnaître, selon une réaction de type antigène-anticorps, lesdits anticorps ou leurs fragments. 19/ Procédé d'obtention de banques d'ADN Neisseria meningitidis-spécifiques, comprenant les étapes de - de mélange de deux populations d'ADN provenant respectivement d'une souche de Neisseria meningitidis, ou souche de référence, pour laquelle la banque spécifique doit etre constituée, et d'une souche de Neisseria gonorrhoeae, ou souche de soustraction, les séquences d'ADN de ces souches étant telles qu'obtenues par cisaillement aléatoire de l'ADN de la souche de soustraction, notamment par passages répétés à travers une seringue, et clivage de l'ADN de la souche de référence, de préférence par une enzyme de restriction produisant des fragments de taille inférieure à lkb environ, 20/ Banques de clones d'ADN telles qu'obtenues par mise en oeuvre du procédé selon la revendication 19. 21/ Application du procédé selon la revendication 19 pour l'obtention de banques d'ADN spécifiques d'une cellule donnée ou d'un variant donné d'une même espèce de cellule, dès lors qu'il existe une autre espèce ou un autre variant proche génomiquement, et exprimant des pouvoirs pathogènes différents, en particulier de banques d'ADN spécifiques de cryptocoques, d'Haemophilus, de pneumocoques ou encore d'Escherichia. 22/ Méthode de diagnostic d'une infection méningococcique, et plus particulièrement de la méningite méningococcique, par mise en évidence de la présence de Neisseria meningitidis dans un échantillon biologique caractérisée en ce qu'elle comprend les étapes de - mise en contact d'un échantillon biologique à analyser, avec un réactif élaboré à partir d'au moins un acide nucléique tel que défini dans l'une des revendications 1 à 11, ou 14, le cas échéant sous forme de sonde nucléotidique, ou d'amorce, ou en variante à partir d'au moins un anticorps, ou un fragment d'anticorps, tel que défini dans la revendication 18, dans des conditions permettant respectivement une hybridation ou une réaction de type antigène-anticorps, et - révélation du produit de réaction éventuellement forme. 23/ Méthode de diagnostic d'une réaction immunitaire spécifique de l'infection méningococcique, caractérisée en ce qu'elle comprend les étapes de - mise en contact d'un échantillon biologique à analyser avec au moins un polypeptide selon l'une quelconque des revendications 16 ou 17 ou d'un antianticorps selon la revendication 18, ou d'un fragment de celui-ci, ces produits étant, le cas échéant, marqués dans des conditions permettant la réalisation d'une réaction de type antigène-anticorps, et - révélation du produit de réaction éventuellement formé. 24/ Kits pour la mise en oeuvre d'une méthode selon l'une quelconque des revendications 22 ou 23, caractérisés en ce qu'ils comportent : - au moins un réactif tel que défini dans la revendication 22 ou 23, à savoir de type acide nucléique, anticorps ou polypeptide, - les produits, notamment marqueurs ou tampons, permettant la réalisation de la réaction d'hybridation nucléotidique ou de la réaction immunologique visée, ainsi qu'une notice d'utilisation. 25/ Composition vaccinale incluant dans son spectre, en particulier en association avec au moins un vaccin pour l'enfance, une prophylaxie à visée anti méningococcique, et destinée à prévenir toute forme d'infection par Neisseria meningitidis, caractérisée en ce qu'elle comprend, en association avec un/des véhicule(s) physiologiquement acceptable(s), une quantité efficace - de polypeptide selon la revendication 16 ou 17, ou - d'anticorps ou de fragment d'anti-anticorps selon la revendication 18, ce matériel étant éventuellement conjugué, afin de renforcer son immunogénicité, à une molécule porteuse telle que protéine de polyovirus, toxine tétanique, protéine issue de la région hypervariable d'une piline. 26/ Composition vaccinale incluant dans son spectre, en particulier en association avec au moins un vaccin pour l'enfance, une prophylaxie à visée antiméningococcique, et destinée à prévenir toute forme d'infection par Neisseria meningitidis, caractérisée en ce qu'elle comprend, en association avec un/des véhicule(s) physiologiquement acceptable(s), une quantité efficace - d'acides nucléiques selon l'une quelconque des revendications 1 à 11 ou 14, ou - de cellules selon la revendication 12 ou 13.