Brevet FR2751222A1 — publié le 19980123

L'invention concerne de nouvelles compositions contenant au moins un acide nucléique et leurs applications dans le domaine biomédical, en particulier en thérapie génique. Jusqu'à la fin des années quatre-vingt, l'utilisation des liposomes en vue d'applications biomédicales et plus précisément en thérapie génique ne semblait guère prometteuse. Les résultats de transfection (traduction et expression d'un gène de cellules procaryotes ou eucaryotes par des cellules eucaryotes), essentiellement transitoire, étaient relativement médiocres. Le recours aux enveloppes externes de virus a accru très significativement les résultats des transferts de gènes dans une multitude de lignées cellulaires in vitro. Par contre, il est certain que leur utilisation en thérapie humaine et animale soulève des problèmes étant donné les dangers iatrogènes possibles qu'elles représentent. Vers la fin de la décennie précédente, il est apparu que l'utilisation de tensioactifs cationiques améliorait très nettement les résultats de transfection. Depuis, malgré certains problèmes liés à l'utilisation des vecteurs cationiques de nombreuses formulations ont été proposées dont certaines sont brevetées et commercialisées. Trois sortes de vecteurs non-viraux sont en général utilisés: - des polymères cationiques, - des vecteurs biochimiques constitués d'une protéine cationique associée à un récepteur cellulaire, - des lipides cationiques associés ou non à des liposomes. Tous ces vecteurs contiennent des molécules cationiques. L'utilisation de tels vecteurs se trouve notamment décrite dans les publications suivantes: J.P. Behr et al. Proc. Nat. Ac. Scienc. 86, 6982, 1989 M. Cotten et Wagner Curr. Opin. Cell Biol. 4, 705, 1993 J. Haensler and F.C. Szoka Bioconjug. Chem. 4, 372, 1993 C.P. Hodgson Bio Technology 13, 222, 1995 F.D. Ledley Hum. Gene Ther. 6, 1129, 1995 J.S. Remy et al. Proc. Nat. Ac. Scienc. 92, 1744, 1995 V.S. Trubettskoy et al. Biochem. Biophys, Acta 1131, 311, 1992 Deux problèmes essentiels relèvent de l'utilisation des vecteurs cationiques: 1 - ces tensioactifs sont généralement cytotoxiques et même si certaines molécules spécifiques ont été développées afin d'en réduire la toxicité, ce problème n'est pas entièrement résolu, 2 - on ne peut pas envisager leur application in vivo car ces vecteurs interagissent très fortement, du fait de leur charge, avec les parois cellulaires et se collent rapidement sur les cellules voisines du site d'injection, en réduisant la diffusion systémique. C'est pourquoi ils trouvent leur utilisation préférentielle in vitro pour des cellules en culture, dans le transfert de gènes. Il est bien connu que les liposomes sont des structures colloïdales comportant un coeur aqueux séparé du milieu extérieur par une ou plusieurs bicouches de molécules phospholipidiques. Leur application en cosmétique et en pharmacologie a fait l'objet d'un grand nombre de brevets décrivant de multiples utilisations de ces vecteurs depuis leur découverte dans les années 1960. D'un point de vue des applications, on a très vite distingué les liposomes composés d'une seule bicouche, des liposomes composés de plusieurs bicouches souvent désignées par l'abréviation MLV correspondant à la terminologie anglaise "Multi-Layered Vesicles". Les vésicules multicouches ont une taille qui est mal contrôlée et est généralement largement supérieure au micromètre. Parmi les vésicules unilamellaires, on distingue les petites vésicules souvent désignées par l'abréviation SUV correspondant à la terminologie anglaise "Small Unilamellar Vesicles" dont la taille ne dépasse pas 100 à 300 nm et les grandes vésicules souvent désignées par l'abréviation LUV correspondant à la terminologie anglaise "Large Unilamellar Vesicles" qui peuvent atteindre plusieurs dizaines de microns de taille. Du fait de leur taille importante, les vésicules multilamellaires (MLV) n'ont que peu d'utilité dans les applications médicales. En effet, les risques d'embolie que comporte l'introduction de particules de taille supérieure au micromètre dans la circulation sanguine rendent leur utilisation impossible par injection intra-veineuse. De plus, une taille trop importante empêche les vésicules de franchir les barrières tissulaires, permettant de les retrouver dans le sang lorsqu'ils sont injectés par voie intra-musculaire ou sous-cutanée. Enfin, il n'existe pas de procédés réellement efficaces pour produire des MLV de façon parfaitement contrôlée. La plus grande partie des applications ont été développées avec des SUV qui répondent aux critères de sécurité et de contrôle nécessaires à une utilisation biomédicale. L'un des problèmes pratiques de l'utilisation des liposomes pour la vectorisation des médicaments ou leur utilisation en thérapie génique est le faible rendement dû au fait que le pourcentage de la solution aqueuse de départ effectivement encapsulée dépasse rarement 30 %. De plus, la méthode généralement suivie fait appel à des étapes d'évaporation de solvants organiques intervenant dans le procédé de fabrication. Enfin, les résultats expérimentaux se sont révélés très décevants. En effet, le processus communément admis pour l'incorporation dans les cellules des vésicules lipidiques, ou des complexes cationiques contenant de l'ADN, passe par un mécanisme d'endocytose. Dans le cytoplasme, l'objet en cours de pénétration est inclus dans un endosome qui contient des enzymes, en particulier des DNases, capables de détruire tout matériel génétique intrus. Les liposomes, du fait de leur faible nombre de membranes lipidiques entourant le corps aqueux ne présentent pas une protection suffisante pour résister à l'action destructrice des lysosymes endosomiaux. De ce fait, même s'ils sont efficaces pour pénétrer le cytoplasme de la cellule, les liposomes ne permettent à l'ADN d'atteindre le noyau qu'avec un très faible rendement. n est donc crucial de développer des vecteurs synthétiques compatibles avec une utilisation in vivo et, ceci, d'autant plus qu'il n'existe pas, à l'heure actuelle, un vecteur efficace pour des molécules susceptibles d'être appliquées en thérapie génique humaine et/ou animale. Seules, les enveloppes virales montrent une efficacité en transfection compatible avec une application humaine ou animale. Les recherches menées par les inventeurs les ont amenés à découvrir de nouveaux vecteurs multilamellaires de petite taille, non cationiques, permettant d'encapsuler, de protéger et de délivrer de l'ADN dans des cellules et, ceci, avec une grande efficacité d'encapsulation ainsi qu'une grande facilité de préparation. Un autre avantage est que toutes les molécules entrant dans la préparation des compositions de l'invention sont disponibles commercialement. Un autre avantage du procédé permettant la préparation des compositions de l'invention est qu'il permet d'utiliser une grande variété de tensioactifs. Selon un autre de ses avantages, l'invention permet, le cas échéant, d'incorporer dans les compositions des produits à caractère cationique déjà connus pour leur intérêt en transfection, les autres ingrédients de la composition de l'invention permettant de masquer le caractère cationique de cette molécule, permettant ainsi de l'utiliser pour des applications in vivo. Ainsi, l'invention fournit donc, en outre, un moyen d'augmenter l'efficacité ou de diminuer la toxicité d'une molécule cationique connue pour son utilisation en transfection. En effet, la plupart des composés cationiques utilisés sont cytotoxiques et on peut espérer diminuer cette cytotoxicité en encapsulant ces molécules, ce qui constitue un avantage complémentaire de l'invention L'invention concerne selon l'une de ses caractéristiques essentielles une composition contenant au moins un acide nucléique dont au moins une partie se trouve inclus à l'intérieur de vésicules multilamellaires, caractérisée en ce que lesdites vésicules sont constituées de bicouches comprenant au moins un agent tensioactif, lesdites bicouches étant concentriques et conférant auxdites vésicules une structure en oignon. Par structure en "oignon", on entend une structure multilamellaire, dans laquelle les vésicules de forme sensiblement sphérique sont constituées d'une succession de bicouches concentriques et, cela, du coeur à la périphérie des vésicules, d'où le nom de structure en oignon utilisé, par analogie, pour qualifier de telles structures. De telles structures sont avantageusement obtenues par incorporation de l'acide nucléique dans une phase lamellaire cristal-liquide comprenant au moins un agent tensioactif suivi d'une transformation de cette phase cristal-liquide lamellaire en une phase dense de vésicules multilamellaires de petite taille. Selon le brevet français FR-2 689 418, cette transformation peut être faite lors d'une étape de cisaillement de la phase cristal-liquide, ce qui conduit à des vésicules ou microcapsules de taille contrôlée. Toutefois, en jouant sur la formulation de la phase lamellaire cristal-liquide, en particulier sur la nature des tensioactifs entrant dans sa composition, la transformation de cette phase cristal liquide en vésicules peut être obtenue par simple sollicitation mécanique, en particulier lors du mélange des constituants. La formulation fait avantageusement intervenir un mélange de molécules tensioactives. Il est généralement utilisé au moins deux tensioactifs différents ayant des balances hydrophile lipophile différentes, ce qui permet de régler en continu les propriétés des bicouches et ainsi de contrôler l'apparition de l'instabilité qui gouverne la formation des vésicules multilamellaires. Selon une variante avantageuse, les vésicules constituant les compositions de la présente invention ont des dimensions inférieures à 1 ,ut, de préférence comprises entre 0,1 et 1,lm. Selon une autre variante avantageuse de l'invention, les tensioactifs constituant les bicouches des vésicules sont des tensioactifs non cationiques, ce qui présente, comme on l'a vu précédemment, un gros avantage par rapport aux compositions de l'art antérieur mettant en oeuvre des molécules cationiques. Selon une variante avantageuse, les membranes des vésicules contenues dans les compositions de l'invention contiennent avantageusement au moins un agent tensioactif choisi dans le groupe constitué: - des phospholipides hydrogénés ou non hydrogénés, - des acides gras en C6 à C18, saturés ou mono- ou polyinsaturés, linéaires ou ramifiés, sous forme d'acide ou de sel d'un métal alcalin, alcalino-terreux ou d'une amine, - des esters, éthoxylés ou non, de ces mêmes acides gras et de saccharose, de sorbitan de mannitol, de glycérol ou de polyglycérol, de glycol, - des mono-, di- ou triglycérides ou des mélanges de glycérides de ces mêmes acides gras, - des alcools gras en C6 à C18, saturés ou mono- ou polyinsaturés, linéaires ou ramifiés, éthoxylés ou non, - des éthers, éthoxylés ou non, de ces mêmes alcools gras et de saccharose, de sorbitan, de mannitol, de glycérol ou de polyglycérol, de glycol, - des huiles végétales polyéthoxylées, hydrogénées ou non hydrogénées, - des polymères séquencés de polyoxyéthylène et de polyoxypropylène (poloxamères), - de l'hydroxystéarate de polyéthylèneglycol, - des alcools à squelette stérol tel que le cholestérol, le sistostérol. Selon une variante avantageuse, les tensioactifs entrant dans la composition des bicouches des vésicules sont constitués de tensioactifs non cationiques. Les tensioactifs choisis, en particulier les tensioactifs cités ci-dessus, sont avantageusement choisis dans la catégorie des tensioactifs permis par la législation pour l'utilisation pharmaceutique en fonction de la voie d'administration. On choisira avantageusement parmi les tensioactifs ci-dessus, deux tensioactifs présentant des propriétés relativement différentes, en particulier une balance hydrophile lipophile (HLB) différente. Le premier tensioactif présentera avantageusement une balance hydrophile lipophile comprise entre 1 et 6 alors que le deuxième tensioactif aura une balance hydrophile lipophile comprise entre 3 et 15. Comme on l'a vu précédemment, un meilleur contrôle de la taille des vésicules multicouches pourra être obtenu en procédant selon le brevet FR2689418. La préparation obtenue après transformation de la phase multilamellaire cristal liquide en vésicules multilamellaires peut ensuite être diluée, en particulier avec un solvant aqueux pour obtenir ainsi une suspension aqueuse de vésicules. Comme exposé précédemment, un des inconvénients des vecteurs d'acide nucléique connus à ce jour, en particulier des vecteurs de type liposome, est de ne permettre que rarement de dépasser des taux d'encapsulation de 30 %. Le procédé utilisé pour préparer les vésicules selon l'invention permet, quant à lui, d'atteindre des taux d'encapsulation qui peuvent être voisin de 100 %. Toutefois, un tel taux d'encapsulation, du fait de la grande activité obtenue grâce à la structure particulière des vésicules de l'invention ne s avère pas toujours nécessaire. Ainsi, le taux d'encapsulation du(des) acide(s) nucléique(s) dans les compositions de l'invention est avantageusement d'au moins 10 %, de préférence d'au moins 40 % mais peut également être compris entre 60 et 100 OJo, ce qui représente un avantage supplémentaire par rapport aux technologies de l'art antérieur. Les compositions de l'invention contenant des vésicules renfermant au moins un acide nucléique peuvent être utilisées pour des applications in vitro, en particulier pour transformer une lignée cellulaire, en particulier pour l'immortaliser ou en modifier l'expression d'un ou plusieurs gènes. Elles peuvent également être utilisées pour la préparation de compositions pharmaceutiques utilisables en thérapie génique. A titre d'exemples d'acide nucléique que peuvent renfermer les vésicules de l'invention, on citera l'ADN ou une séquence nucléotidique d'ADN. Les vésicules peuvent également renfermer un gène particulier ou une séquence de ce gène, plus particulièrement une séquence codant pour une protéine donnée. Les compositions de l'invention peuvent également inclure dans les vésicules de l'ARN ou une séquence nucléotidique d'ARN. On peut également, selon une autre variante de réalisation, inclure dans les vésicules un oligonucléotide, ce nucléotide pouvant être de type sens et/ou anti-sens. Les vésicules de l'invention ont avantageusement une taille inférieure à 1 ,um, de préférence comprise entre 0,1 et 1,ut. Cette taille pourra être contrôlée et limitée par l'application d'un cisaillement homogène sur la phase cristal liquide selon le procédé du brevet FR-2 689418 ou WO 9319735. Comme on l'a vu précédemment, un des avantages des compositions de l'invention est qu'elles fournissent un véhicule d'acide nucléique ne contenant pas de molécule à caractère cationique. Toutefois, selon une variante de l'invention, il est possible d'inclure certains adjuvants cationiques, la présence des vésicules multilamellaires de l'invention permettant de masquer leur toxicité ou d'augmenter leur activité. il semble que l'effet de certains adjuvants cationiques est de permettre de fixer de façon électrostatique les vésicules sur les parois des cellules, ce qui explique l'augmentation d'efficacité des vecteurs. De plus, il apparaît que le fait d'encapsuler une partie des molécules cationiques permet de diminuer leur cytotoxicité, l'encapsulation diminuant le pourcentage de molécules cationiques susceptibles d'entrer en contact avec les cellules environnantes. L'encapsulation permet aussi de réduire la concentration en molécule cationique utilisée, grâce à l'effet de synergie qui en améliore l'efficacité. Ainsi donc, il est possible de co-encapsuler dans les vésicules selon l'invention un adjuvant cationique en évitant les inconvénients connus selon l'art antérieur lors de l'utilisation de tels produits. L'invention fournit un moyen de vectorisation d'acide nucléique, cette vectorisation pouvant être réalisée aussi bien in vivo que in vitro. Ainsi, l'invention concerne, suivant d'autres caractéristiques essentielles, des compositions pharmaceutiques contenant des vésicules telles que définies précédemment renfermant différents acides nucléiques, en suspension dans un véhicule pharmaceutiquement acceptable. Selon l'activité biologique ou pharmaceutique envisagée, différents types d'acides nucléiques peuvent être encapsulés. Ainsi, l'encapsulation d'un gène complet pourra être réalisée en vue de fournir une composition pharmaceutique destinée à suppléer un gène déficitaire ou absent. A titre d'exemple, une telle utilisation pourra être faite dans le traitement de la mucoviscidose. L'encapsulation de constructions nucléiques comme des oligonucléotides destinés à induire une surexpression ou une atténuation de l'activité d'un gène spécifique pourra être utilisée dans des applications en cancérologie ou en virologie. On peut aussi utiliser ces vecteurs dans des modèles de vaccination à partir d'ADN codant pour une protéine antigénique. On peut aussi vectoriser de l'ARN car la vectorisation d'une séquence nucléotidique complémentaire s'hybridant au transcrit inhibe la lecture de l'ARNm par les ribosomes et en empêche sa traduction en une protéine active. L'invention concerne également l'utilisation des compositions définies précédemment comme agent destiné à transformer une lignée cellulaire. Elle concerne donc un procédé de transformation in vitro d'une lignée cellulaire, consistant à traiter ladite lignée par une composition telle que décrite précédemment. Il s'agit, dans ce cas plus précisément, d'amener un gène au niveau du noyau de la cellule de manière à ce qu'il soit intra-nucléaire et/ou intrachromosomique afin d'en modifier sa propre expression et/ou l'expression d'autres gènes codant pour une ou plusieurs protéines, soit d'immortaliser une lignée par incorporation d'un gène viral et/ou d'un oncogène viral. Les exemples ci-dessous sont donnés en référence aux figures 1 à 3 qui représentent respectivement: - figure 1 : l'histogramme des rayons exprimés en nm des vésicules multilamellaires préparées selon l'exemple 1; - figure 2 > donnée en référence à l'exemple 3, l'efficacité de la transfection du gène de la ,8-galactosidase sur des cellules fibroblastiques de peau humaine pour deux types de formulations différentes selon l'invention et un vecteur commercial; - figure 3, donnée en référence à l'exemple 4, les résultats comparatifs de l'efficacité de la transfection du gène de la ss-galactosidase sur des fibroblastes humains en utilisant différentes formulations de microvésicules selon l'invention, contenant ou non un adjuvant cationique, en comparaison avec un vecteur commercial. EXEMPLES Sauf indications contraires, les quantités et proportions données dans les exemples sont en poids. Exemple 1 Protection vis-à-vis de la DNase Cet exemple a pour but de montrer l'efficacité des microvésicules multilamellaires selon l'invention pour encapsuler un ADN et le protéger de l'action de l'enzyme DNase. Pour cela, un ADN greffé (ADN-DIG) est encapsulé selon le procédé de l'invention. Les microvésicules contenant l'ADN, ainsi que l'ADN libre, sont ensuite soumises à l'action de l'enzyme. L'intégrité de l'ADN est ensuité révélée par hybridation de l'ADN complémentaire et coloration. On observe alors que l'ADN encapsulé selon le procédé est intact, alors que l'ADN libre a été détruit par l'enzyme. a) Préparation de l'échantillon 10,ut d'une solution à 1 wug/50,ul d'ADN-DIG (Boehringer Mannheim), soit 200 ng d'ADN-DIG sont mélangés à 375 cl d'eau, 100 mg d'alcool laurique éthoxylé à 4 molécules d'oxyde d'éthylène (Lauropal-4-Witco) et 525 mg de lécithine de soja à 90 % de phosphatidylcholine (Phospholipon P90, Natterman). L'eau est préalablement stérilisée par filtration sur un filtre de 0,25,ut, tandis que les tensioactifs sont traités par rayonnement UV. Après mélange à température ambiante, au cours duquel on prend soin d'appliquer un cisaillement homogène et uniforme sur tout l'échantillon, on obtient une pâte, correspondant à la phase cristal-liquide, arrangée sous forme d'assemblée compacte de microvésicules. On laisse reposer cette pâte pendant 24 h. Pour leur utilisation, on prépare une dispersion des microvésicules en diluant 50 mg de pâte dans 1 ml d'eau stérile. b) Caractérisation La taille des microvésicules est mesurée par diffusion dynamique de la lumière sur une dispersion à 1 % de la pâte dans l'eau. On obtient une valeur du diamètre de 0,2,ut m environ. Cette valeur est confirmée par microscopie électronique (cryofracture). Les résultats de mesure de taille sont indiqués sur la figure 1 donnant l'histogramme de la distribution de taille, observée par microscopie. Un contrôle plus précis de la taille peut être obtenu en utilisant le procédé décrit dans le brevet WO-A-93 19735. c) Protocole d'essai On prépare une dispersion de base des microvésicules contenant l'ADN à partir de 50 mg de pâte, dispersée dans 1 ml d'eau. Cette dispersion de base est ensuite diluée dans l'eau pour obtenir 5 dispersions d'essais, contenant de 10 ng/ml à 1 pg/ml d'ADN, par variation d'un facteur 10. On prépare des solutions d'ADN DIG libre de mêmes concentrations pour servir de témoins. Ces dispersions sont mises en contact pendant 1 h à 370C avec une solution de DNase I (Boehringer Mannheim) dans une proportion de 2 unités de DNAse pour 1,ug d'ADN. Dans un deuxième temps, la présence ou non d'ADN DIG est révélée par fixation sur une membrane de nitrocellulose (Hybond-C super) puis par hybridation avec l'ADN-DlG complémentaire en utilisant la technique du "dot-blot". La membrane est ensuite révélée par coloration aux NBT/BCIP suivant le protocole développé par Boehringer Mannheim et publié dans Genius, Applications Manuel, Boehringer-Mannheim Biochemicals Indianapolis 5-7, 1989. d) Résultats On constate par analyse du "dot-blot" que: l'ADN libre non traité par la DNAse est visualisé par la technique du "dot-blot" l'ADN libre traité par la DNAse est totalement détruit, pour toutes les concentrations l'ADN encapsulé selon le procédé de l'invention, non traité à la DNAse est visualisé par la technique l'ADN encapsulé selon le procédé de l'invention, traité à la DNAse reste nettement visible, et est donc protégé de l'action enzymatique les microvésicules vides (sans ADN) ne donnent pas de réaction visible dans l'analyse, ce qui écarte tout risque de faux positif. Une analyse plus fine de l'intensité comparée des images de "dot-blot" permet d'évaluer qu'environ 80 % de l'ADN a été protégé de l'action enzymatique. On peut en déduire que les 20 % détruits correspondent à l'ADN résiduel non encapsulé > ce qui permet d'évaluer le taux d'encapsulation aux environs de 80 %. Exemple 2 Interaction entre l'ADN encapsulé et cellules en culture Le but de cet exemple est de montrer qu'un ADN encapsulé selon le procédé de l'invention est capable de pénétrer à l'intérieur de cellules, d'y être relâché, et d'atteindre le noyau. Pour cela, on couple un ADN plasmidique à une sonde fluorescente, qui permettra une visualisation de l'incorporation cellulaire par microscopie de fluorescence. a) Préparation de l'échantillon L'ADN plasmidique (pBR 322, de 4363 paires de base, Promega) à une concentration de 0,1 ,ug/ml est couplé à la fluorescéine (sonde YoYo-1, Molecular Probe Inc.) puis encapsulé dans des microvésicules multilamellaires, selon le même mode opératoire que pour l'exemple 1, avec: solution aqueuse d'ADN YoYo : 37,5 % Alcool laurique éthoxylé à 4 mole d'OE: 10 % Lécithine de soja (90 % de phosphatidylcholine) : 52,5 % b) Incubation des cellules: Les diverses lignées cellulaires, fibroblastes humains (culture primaire), NIH 3T3 (ATCC), ROS 17/2.8 ostéblastes de rats (ATCC)) sont maintenues dans des conditions classiques de culture (IMDM, Gibco, Life technology), contenant 10 % de sérum de veau (Gibco, Life technology), 10 000 U de pénicilline-streptomycine (Gibco, Life technology) à 37in, en atmosphère à 5 % de CO2. Les cellules sont mises en présence d'une dispersion à 10 % de microvésicules contenant l'ADN pendant 5 min, dans un milieu IMDM seul. Après ce temps d'incubation, les cellules sont lavées pour éliminer les dispersions de vésicules puis visualisées. c) Résultat Les cellules sont visualisées par microscopie de fluorescence, après différentes durées d'incubation. A A t = O, (pour contrôle > avant lavage) on observe les microvésicules dans le milieu surnageant comme des points fluorescents. A A t = 5 min, les microvésicules fluorescentes sont visualisées au contact de la surface des cellules. On note le début d'une diffusion intracytoplasmique de la fluorescence. A A t = 1 heure, on observe la diffusion intracytoplasmique de la fluorescence. Le pourtour nucléaire est nettement apparent, un début de fluorescence au niveau du noyau apparaît. Entre t = 2 et 8 heures, la fluorescence commence à apparaître dans le noyau. Elle reste forte dans le cytoplasme. . A t = 48 heures, la fluorescence est plus faible et ne subsiste qu'à proximité des noyaux. Cet exemple montre que l'ADN a pu être incorporé dans les fibroblastes, puis a traversé le cytoplasme pour atteindre le noyau. Exemple 3 Encapsulation d'un gène et mise en évidence du transfert et de l'expression transitoire de ce gène Le but de cet exemple est de montrer qu'un gène encapsulé dans les microvésicules multilamellaires de l'invention peut être incorporé dans le noyau d'une cellule et s'exprimer. Le test retenu est l'utilisation du gène qui code pour la 13-galactosidase, et dont l'expression est mise en évidence par la coloration bleue des noyaux des cellules transfectées, lors de la réaction avec le substrat X-GAL. Dans cet exemple, l'efficacité de transfection est comparée à celle d'un vecteur commercial, le LipofectAce(R) (Life Technology). a) Préparation des microvésicules Les microvésicules contenant le gène qui code pour la ss-galactosidase (LacZ) sont préparées selon le mode opératoire de l'exemple 1, en utilisant une solution aqueuse du gène, à 10 mg/ml. Trois types de gène de type LacZ modifié ont été essayés : pRSCLacZ, pCHLacZ et pRSVLacZ-Sal-1. Chaque gène a été coencapsulé avec de la polylysine en concentration 100 M, de poids moléculaire soit 3,5 kDa, soit 10 kDa. La composition des microvésicules est la suivante: Lécithine de soja à 90 % de phosphatidylcholine ................ 41,5 % Cholestérol (Sigma) . 3,5 % Oléate de potassium . .... ......... ......... 5 % Solution aqueuse d'ADN et de polylysine . . . . 49,5 % %. Pour l'incubation des cellules, les microvésicules sont dispersées dans liteau, afin d'obtenir un milieu d'incubation contenant 10,ug/ml d'ADN. b) Transfection Les cellules (fibroblastes humains, culture primaire) sont maintenues dans des conditions classiques de culture comme dans l'exemple 2. Pour l'incubation, le milieu est remplacé par un milieu IMDM contenant 100 M de chloroquine, et sans sérum. L'incubation avec les microvésicules dure 2 heures. Les cellules sont ensuite lavées et maintenues en culture pendant 48 heures dans un milieu complet (rMDM > sérum) pénicilline-streptomycine). La visualisation de la transfection est effectuée par lavage des cellules, fixation, et addition du substrat X-GAL (Biosynth AG). Ce substrat est clivé par l'enzyme correspondant au gène de la ss-galactosidase, en donnant un précipité bleu foncé exclusivement intracellulaire dû au signal intranucléaire désigné généralement par "nls", selon la terminologie anglaise "nuclear localisation signal". La même expérience est effectuée, pour comparaison, en utilisant un vecteur commercial LipofectAce( (Life Technology), utilisé selon le protocole du fabricant, avec les mêmes concentrations de gène. c) Résultat Les résultats, sous forme de pourcentages de cellules transfectées sont donnés sur la figure 2. Chaque histogramme correspond à un des gènes (de gauche à dr microvésicules selon l'invention n'est pas détruit par la DNAse. Cependant, le taux d'encapsulation observé est plus faible. Le même test de protection vis-à-vis de la DNAse effectué sur le gène vectorisé par le produit commercial ne montre aucune protection de ce type de vecteurs Exemple 4 Encapsulation d'un gène et mise en évidence du transfert et de l'expression transitoire de ce gène: effet d'adjuvants cationiques Cet exemple a pour but de mettre en évidence la possibilité d'utilisation d'adjuvants de type cationique pour améliorer l'efficacité de la transfection. L'adjuvant utilisé est un polymère, la polyéthylèneimine. Plusieurs essais sont réalisés, dans des conditions analogues à celles de l'exemple 3 (transfection du gène de la 13-galactosidase), mais sans utiliser de polylysine. Pour comparaison deux formulations avec polylysine, mais sans adjuvant, sont préparées, l'une identique à celle de l'exemple 3 (lécithine, oléate de potassium, cholestérol), l'autre identique à celle de l'exemple 1 (lécithine, laureth 4). Enfin, pour contrôle > trois expériences de transfection sont effectuées en utilisant soit un vecteur commercial LipofectAce() (Life Technology), soit de l'ADN non encapsulé > complexé à la polyéthylèneimine. a) Préparation des microvésicules Le mode opératoire est strictement identique à celui utilisé dans l'exemple 3, en utilisant comme gène le pRSVLacZ. La polyéthylèneimine (masse molaire 50kDa, Sigma) est additionnée à la solution aqueuse d'ADN avant encapsulation, à deux concentrations : 10 mM et 100,ut. Les témoins sans polyéthylèneimine sont préparés selon le mode opératoire de l'exemple 3 (lécithine, cholestérol, oléate de potassium), ou de l'exemple 1 (lécithine, laureth 4). b) Transfection Le protocole est identique à celui de l'exemple 3. La transfection est effectuée sur des fibroblastes humains (culture primaire). Dans tous les cas, la concentration en gène dans le milieu d'incubation est de 10,ug/ml. Les expériences avec l'ADN non encapsulé sont effectuées en introduisant dans le milieu d'incubation, à la place de la dispersion de vésicules selon l'invention, une solution contenant l'ADN et la polyéthylèneimine préalablement mélangés. c) Résultat Les résultats, donnés sous la forme d'un histogramme des pourcentages de cellules transfectées, sont donnés sur la figure 3. Les résultats correspondent, de gauche à droite aux essais suivants: 1-microvésicules à base de lécithine et d'oléate de potassium 2-microvésicules à base de lécithine et d'alcool laurique à 4 molécule d'oxyde d'éthylène (laureth 4) 3-microvésicules à base de lécithine et d'oléate de potassium, co-encapsulant la polyéthylèneimine, en concentration 10 mM 4-microvésicules à base de lécithine et d'oléate de potassium, co-encapsulant la polyéthylèneimine, en concentration 100,ut 5-ADN complexé au poléthylèneimine, avec une concentration en polymère de 10 mM 6-ADN complexé à la polyéthylèneimine, avec une concentration en polymère de 100,uM 7-utilisation du vecteur commercial LipofectAce(0 (Life Technology). On observe que grâce à la co-encapsulation de la polyéthylèneimine, le taux de cellule transfecté atteint 35 % . L'ADN non encapsulé > simplement complexé par la polyéthylèneimine est aussi transfecté, mais présente alors un moins bon taux de transfection. Tous les essais effectués avec des vecteurs basés sur l'oléate de potassium, avec ou sans adjuvant, donnent un résultat meilleur que le vecteur commercial. REVENDICATIONS 1. Composition contenant au moins un acide nucléique dont au moins une partie se trouve inclus à l'intérieur de vésicules multilamellaires, caractérisée en ce que lesdites vésicules sont constituées de bicouches comprenant au moins un agent tensioactif, lesdites bicouches étant concentriques et conférant auxdites vésicules une structure en oignon. 2. Composition selon la revendication 1, caractérisée en ce que lesdites vésicules ont des dimensions inférieures à 1,ut, de préférence comprises entre 0,1 et 1 ssm. 3. Composition selon l'une des revendications 1 ou 2, caractérisée en ce que les tensioactifs constituant lesdites bicouches desdites vésicules sont des tensioactifs non cationiques. 4. Composition selon la revendication 3, caractérisée en ce que lesdits agents tensioactifs non cationiques sont choisis dans le groupe constitué: - des phospholipides hydrogénés ou non hydrogénés, - des acides gras en C6 à C1g, saturés ou mono- ou polyinsaturés, linéaires ou ramifiés, sous forme d'acide ou de sel d'un métal alcalin, alcalino-terreux ou d'une amine, - des esters, éthoxylés ou non, de ces mêmes acides gras et de saccharose, de sorbitan, de mannitol, de glycérol ou de polyglycérol, de glycol, - des mono-, di- ou triglycérides ou des mélanges de glycérides de ces mêmes acides gras, - des alcools gras en C6 à C18, saturés ou mono- ou polyinsaturés, linéaires ou ramifiés, éthoxylés ou non, - des éthers, éthoxylés ou non, de ces mêmes alcools gras et de saccharose, de sorbitan, de mannitol, de glycérol ou de polyglycérol, de glycol, - des huiles végétales polyéthoxylées, hydrogénées ou non hydrogénées, - des polymères séquencés de polyoxyéthylène et de polyoxypropylène (poloxamères), - de l'hydroxystéarate de polyéthylèneglycol, - des alcools à squelette stérol tel que le cholestérol, le sistostérol. 5. Composition selon l'une des revendications 1 à 4, caractérisée en ce que les bicouches desdites vésicules comprenant au moins deux agents tensioactifs dont l'un présente une balance lipophile hydrophile (HLB) comprise entre 1 et 6 et l'autre une balance lipophile hydrophile (HLB) comprise entre 3 et 15. 6. Composition selon l'une des revendications 1 à 5, caractérisée en ce qu'au moins 10 %, et de préférence au moins 40% dudit(desdits) acide(s) nucléique(s), se trouvent inclus à l'intérieur desdites vésicules multilamellaires. 7. Composition selon l'une des revendications 1 à 6, caractérisée en ce que 60 à 100 % dudit ou desdits acides nucléiques se trouvent inclus dans lesdites vésicules. 8. Composition selon l'une des revendications 1 à 7, caractérisée en ce que ledit acide nucléique est de l'ADN ou une séquence nucléotidique d'ADN. 9. Composition selon l'une des revendications 1 à 7, caractérisée en ce que ledit acide nucléique est un gène particulier ou une séquence dudit gène, en particulier une séquence codant pour une protéine donnée. 10. Composition selon l'une des revendications 1 à 7, caractérisée en ce que ledit acide nucléique est de l'ARN ou une séquence nucléotidique d'ARN. 11. Composition selon l'une des revendications 1 à 7, caractérisée en ce que ledit acide nucléique est un oligonucléotide sens et/ou anti-sens. 12. Composition selon l'une des revendications 1 à 11, caractérisée en ce que lesdites vésicules contiennent, en outre, un adjuvant cationique, en particulier une poléthylèneimine, coencapsulé avec ledit acide nucléique 13. Composition pharmaceutique contenant des vésicules tels que définis dans l'une des revendications 1 à 12, en suspension dans un véhicule pharmaceutiquement acceptable. 14. Composition pharmaceutique selon la revendication 13, caractérisée en ce que ledit acide nucléique encapsulé est un gène complet, en particulier un gène destiné à suppléer un gène déficitaire ou absent. 15. Composition pharmaceutique selon la revendication 13, caractérisée en ce que ledit acide nucléique est un oligonucléotide destiné à induire une surexpression ou une atténuation de l'activité d'un gène spécifique. 16. Composition pharmaceutique selon la revendication 13, caractérisée en ce qu'il s'agit d'un vaccin, ledit acide nucléique étant un ADN codant pour une protéine antigénique. 17. Procédé de transformation in vitro d'une lignée cellulaire, caractérisé en ce qu'il consiste à traiter ladite lignée par une composition selon l'une des revendications 1 à 12.