Brevet FR2750865A1 — publié le 19980116

Vaccin vivant recombinant à base d'herpèsvirus canin, notamment contre la maladie de Carré, la rage ou le virus parainfluenza de type 2. La présente invention a trait à des vaccins, de préférence pour chiens, produits à partir d'herpèsvirus canins recombinants, et aux méthodes d'obtention et de préparation de ces virus recombinants. La présente invention a plus particulièrement trait aux recombinants herpèsvirus canins comprenant une cassette d'expression pour un (ou des) gène(s) étranger(s). L'herpèsvirosecanine est causée par l'herpèsviruscanin (en anglais Canine HerpesVirus ou CHV). L'herpèsvirus canin (CHV) est classé dans la famille des Alphaherpesvfrînae. Cet herpèsvirus est un pathogène majeur pour les chiots à la naissance. L'herpèsvirose canine se traduit principalement par une maladie hémorragique chez le chiot et par une maladie bénigne de l'appareil respiratoire supérieur chez les chiens adultes. II n'existe actuellement pas de vaccins pour la protection des chiots contre l'herpèsvirose canine. Par ailleurs, les chiens domestiques sont exposés à de nombreuses autres maladies, et la mise au point d'un vecteur vaccinal pouvant exprimer différents antigènes d'agents pathogènes canins permettrait de simplifier et d'améliorer l'efficacité des programmes de vaccination, en particulier des chiots dans les élevages. Parmi les agents pathogènes d'importance pour le chien, on peut citer le virus de la maladie de Carré, le virus de l'hépatite de Rubarth, le virus de la rage, le virus de la parvovirose canine, le coronavirus canin, le virus parainfluenza de type 2, Bordetella bronchiseptica, Borrella burgdofferi, Leptospire spp., Leishmania înfantum. On connaît peu de choses sur le génome du virus CHV. L'organisation génomique de ce virus n'a été publiée que récemment (Rémond M. et al. J. Gen. Virol. 1996. 77. 37-48) et les gènes des trois glycoprotéines majeures gB, gC et gD, ainsi qu'un gène désigné CHV ORF2 ont été décrits (K. Limbach et ai. J. Gen. Virol. 1994. 75. 2029-2039). A la suite de leurs travaux sur C.HV, les inventeurs ont réussi à déterminer plusieurs régions non essentielles pour la réplication in vitro, lesquelles se sont révélées utiies pour la construction de virus CHV recombinés. Les inventeurs sont donc en mesure de proposer pour la première fois le virus CHV en tant que vecteur de vaccination pour le chien. On a trouvé que les vecteurs vaccinaux selon l'invention présentaient des avantages particuliers pour la vaccination du chien. En effet, I'herpèsvirus canin est très spécifique d'espèce et possède un génome de grande taille contenant plusieurs sites potentiels d'insertion et permettant l'insertion simultanée de plusieurs cassettes d'expression pour des gènes étrangers. Cela offre la possibilité de vacciner les chiens en même temps contre différents agents pathogènes canins en utilisant un seul virus recombiné. L'objectif principal de l'invention est de fournir un vecteur vaccinal permettant l'expression d'immunogènes de pathogènes canins en vue de la protection des chiens contre les principales maladies infectieuses canines. Un autre objectif de l'invention est de fournir un tel vecteur permettant la vaccination des chiens, et en particulier des chiots ayant des anticorps maternels, par voie mucosale, notamment orale, nasale ou conjonctivale. Un autre objectif encore de l'invention est de fournir un tel vecteur qui permette en même temps la vaccination contre l'herpèsvirose chez le chiot. La présente invention a donc pour objet un vaccin vivant recombinant utilisant comme vecteur un herpèsvirus canin comprenant, et exprimant, au moins une séquence nucléotidique codant pour un polypeptide, cette séquence étant insérée dans un site non essentiel pour la réplication in vitro. Les inventeurs ont isolé et analysé un fragment génomique du virus CHV sur lequel ils ont caractérisé 5 cadres ouverts de lecture (COL1 à COL5) parmi lesquels deux (COL3 et COL5) se sont révélés non essentiels pour la réplication in vitro. Par ailleurs, les inventeurs ont trouvé que d'autres régions du génome CHV pouvaient également être utilisées pour insérer des gènes étrangers. Ces sites d'insertion sont : gène thymidine kinase (COL CHV TK) (Rémond M. et ai. Virus Research. 1995. 39. 341-354) et séquence situe entre le COL CHV orf19 (ou COL19) et le COL CHV orf22 (ou COL22)(Rémond M. et al. J. Gen. Virol. 1996. 76. 37-48). Ces sites sont décrits plus précisément dans les exemples de la présente invention. De préférence, la séquence insérée code pour un polypeptide antigénique et, préférentiellement, pour un polypeptide antigénique d'un agent pathogène canin. On peut également insérer des séquences codant pour des protéines immunomodulatrices telles que des cytokines. Selon une modalité avantageuse, on peut associer une séquence codant pour une cytokine, ou analogue, et une séquence codant pour un antigène. Si besoin est, plusieurs séquences de cytokines peuvent être associées entre elles, éventuellement en combinaison avec une ou des séquences codant pour des antigènes. L'insertion dans les sites est réalisée par insertion simple (sans délétion) ou après délétion partielle ou totale du ou des COLs utilisés comme sites d'insertion. Comme virus parental pour la construction de virus CHV recombinés, on peut utiliser en particulier la souche CHV F205 qui a été isolée par L. Carmichael (Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1965. 120. 644-650). Pour l'expression des gènes étrangers insérés sur le génome de CHV selon la présente invention, on utilisera de préférence un promoteur eucaryote fort, tel que, préférentiellement, un promoteur cytomegalovirus (CMV) immediate early (IE). Par promoteur CMV IE, on entend notamment un fragment tel que donné dans les exemples ainsi que ses sous-fragments conservant la même activité promotrice. Le promoteur CMV IE peut être le promoteur humain (HCMV IE) ou le promoteur murin (MCMV IE), ou encore un promoteur CMV IE d'une autre origine, par exemple CMV du rat, du cobaye, ou du porc. On pourra insérer au moins deux séquences nucléotidiques dans un site, sous le contrôle de promoteurs différents. Il pourra notamment s'agir de promoteurs CMV IE d'origines différentes. Selon un développement avantageux de l'invention, on associe au promoteur CMV IE un autre promoteur de telle façon que les deux promoteurs aient leurs extrémités 5' adjacentes et que les transcriptions initiées à partiipde ces deux promoteurs se fassent en sens opposés. Cette disposition particulière permet d'insérer, dans un même site, deux séquences nucléotidiques, l'une sous la dépendance du promoteur CMV IE, l'autre sous celle du promoteur associé. Cette construction est remarquable par le fait que la présence du promoteur CMV IE, et notamment de sa partie activatrice (en anglais "enhancer"), peut activer la transcription induite par le promoteur associé. Comme promoteur associé, on peut citer, par exemple, un promoteur CMV d'espèce différente du premier promoteur. On peut également envisager d'autres promoteurs tels que le promoteur RNA1 .8 du virus de la maladie de Marek (MDV) (G. Bradley et ai. J. Virol. 1989. 63.2534-2542). La séquence nucléotidique insérée dans le vecteur CHV pour être exprimée peut être toute séquence codant pour un polypeptide antigénique d'un agent pathogène canin capable, une fois exprimée dans les conditions favorables procurées par l'invention, d'assurer une immunisation conduisant à une protection efficace de l'animal vacciné contre l'agent pathogène. On pourra donc insérer, dans les conditions décrites par la présente l'invention, les séquences nucléotidiques codant pour les antigènes d'intérêt pour une maladie donnée, notamment les maladies virales, bactériennes ou parasitaires citées plus haut. Le cas typique de l'invention est l'insertion d'au moins une séquence nucléotidique codant convenablement pour un polypeptide du virus de la maladie de Carré (Canine Distemper Virus = CDV) et, de préférence, pour le polypeptide CDV HA (Sidhu M. et ai., Virology. 1993. 193. 66-72) ou pour le polypeptide CDV F (Barrett T. et ai. Virus Research. 1987. 8. 373-386). On peut également insérer ces deux gènes ensemble dans le vecteur CHV. On obtient ainsi un vaccin vivant recombinant assurant une protection contre la maladie de Carré. D'autres cas préférés de l'invention sont l'insertion de séquences nucléotidiques codant pour des antigènes ou des fragments d'antigènes du virus de la rage, en particulier le gène G (Brevets FR-A-2 51 5 685 et EP-A-162 757), du virus de la parvovirose canine (gène VP2)(Parrish C. et ai. J. Virol. 1991. 65. 6544-6552), du virus parainfluenza de type 2 (gènes HA et/ou F). On eut également insérer des séquences codant pour des antigènes de Borrelia burgdorferi, en particulier les gènes codant pour les antigènes OspA et OspB (Bergstrnm S. et ai. Mol. Microbiol. 1989. 3. 479-486). Un cas typique de l'invention est un vaccin comprenant une séquence nucléotidique codant pour un antigène du virus de la maladie de Carré sous le contrôle de CMV IE et une séquence nucléotidique codant pour un antigène d'une autre maladie virale canine, notamment celles citées plus haut, sous le contrôle de l'autre promoteur. L'utilisation des virus recombinants selon l'invention permet de protéger les chiens contre une ou plusieurs des maladies citées plus haut et, en même temps, contre l'herpèsvirose canine. La présente invention a aussi pour objet une formule de vaccin multivalent, comprenant, en mélange ou à mélanger, au moins deux vaccins vivants recombinants tels que définis plus haut, ces vaccins comprenant des séquences insérées différentes, isolées notamment de pathogènes différents. Ces formules de vaccins contiennent des dosages et/ou des véhicules adaptés à la voie d'administration. La présente invention a aussi pour objet les virus CHV modifiés dans l'un au moins des sites indiqués. Elle a aussi pour objet une méthode de vaccination, en particulier des chiens, dans laquelle on administre par toute voie parentérale ou mucosale, mais de préférence par voie mucosale, notamment orale et/ou nasale, une quantité efficace d'un vaccin tel que défini plus haut. La dose vaccinale sera comprise, de préférence, entre 102 DICC50 et 107 DICC50. De préférence, la dose pour la voie parentérale sera comprise entre 104 DICC50 et 107 DICC50, et pour la voie orale et/ou nasale, entre 102 DICC50 et 105 DICC50. Tel que défini, le vaccin est efficace en général après une seule administration par voie orale et/ou nasale. Cependant, des administrations répétées peuvent être nécessaires. La présente invention a aussi pour objet les fragments d'ADN comprenant tout ou partie de la séquence définie par les positions 1 à 6216 sur SEQ ID NO 1 (Figure NO 1), notamment tout ou partie du site COL3 défini et/ou des séquences flanquantes localisées en amont et en aval de ce site, fragments qui seront utiles comme bras flanquants pour les techniques de recombinaison homologue avec le génome du virus CHV choisi comme virus parental. Bien entendu, l'invention concerne aussi les variantes de ces fragments qui correspondent aux séquences équivalentes des autres souches de CHV. Le spécialiste a toute latitude pour choisir les régions servant de bras flanquants en liaison avec le type d'insertion (avec ou sans délétion) ou de délétion (partielle ou totale) choisi. D'une manière générale, les bras flanquants pourront ainsi avoir de 100 à 800 paires de bases, mais peuvent être de plus grande taille si nécessaire. L'invention a notamment pour objet un fragment d'ADN consistant en tout ou partie de la séquence définie par les positions 583 à 4173 sur la séquence SEQ ID No.l. L'invention va être maintenant décrite plus en détail à laide d'exemples de réalisation non limitatifs, pris en référence au dessin, dans lequel Figure 1 : séquence de la région 0Kv (6216 paires de bases) et traduction des différents cadres ouverts de lecture (ORF) présents sur cette séquence (COL1 à COL5). Figure 2 : Plasmide pPB200 (plasmide donneur pour l'insertion de cassettes d'expression dans le site 0Kv COL3). Figure 3 : Construction du plasmide pPB202 (plasmide donneur pour l'insertion de cassettes d'expression dans le site CHV COL5). Figure 4 : Construction du plasmide pPB204 (plasmide donneur pour l'insertion de cassettes d'expression dans le site CHV TK). Figure 5 : Construction du plasmide pPB206 (plasmide donneur pour l'insertion de cassettes d'expression dans le site situé entre les gènes CHV orfl9 et CHV orf22). Figure 6 : Construction du plasmide pPB208 (cassette d'expression pour le gène CDV HA). Figure 7 : Construction du plasmide pPB210 (cassette d'expression pour le gène CDV F). Figure 8 : Construction du plasmide pPB21 3 (plasmide donneur pour l'insertion de la cassette d'expression du gène CDV HA dans le site CHV COL3). Figure 9 : Construction du plasmide pPB214 (plasmide donneur ppur l'insertion de la cassette d'expression du gène CDV F dans le site CHV COL3). Figure 10 : Plasmide PB200' Figure 11 : Construction du plasmide pPB212 (cassette d'expression du gène G du virus de la rage). Figure 12 : Construction du plasmide pPB215 (plasmide donneur pour l'insertion de la cassette d'expression du gène G du virus de la rage dans le site CHV COL3). Figure 13 : Construction du plasmide pPB216 Iplasmide donneur pour l'insertion de la cassette d'expression du gène CDV HA dans le site CHV COL5). Figure 14 : Construction du plasmide pPB217 (plasmide donneur pour l'insertion de la cassette d'expression du gène CDV HA dans le site CHV TK). Figure 15 : Construction du plasmide pPB218 (plasmide donneur pour l'insertion de la cassette d'expression du gène CDV HA le site situé entre les gènes CHV orf1 9 et CHV orf22). Liste des séquences SEQ ID pour les constructions dans les sites d'insertion du vecteur CHV: SEQ ID N 1 Séquence complète de la région CHV COL1 COL5 représentée à la figure 1 SEQ ID N 2 Séquence acides aminés COL1 de la figure 1 SEQ ID NO 3 Séquence acides aminés COL2 de la figure 1 SEQ ID NO 4 Séquence acides aminés COL3 de la figure 1 SEQ ID NO 5 Séquence acides aminés COL4 de la figure 1 SEQ ID NO 6 Séquence acides aminés (partielle) COL5 de la figure 1 SEQ ID NO 7 Oligonucléotide JCA070 SEQ ID NO 8 Oligonucléotide JCA071 SEQ ID NO 9 Oligonucléotide JCA072 SEQ ID N 10 Oligonucléotide JCA073 SEQ ID N0 Il Oligonucléotide JCA074 SEQ ID N0 12 Oligonucléotide JCA075 SEQ ID N 13 Oligonucléotide JCA076 SEQ ID N 14 Oligonucléotide JCA077 SEQ ID N 15 Oligonucléotide JCA078 SEQ ID N 16 Oligonucléotide JCA079 SEQ ID N 17 Oligonucléotide JCA080 SEQ ID N 18 Oligonucléotide JCA081 SEQ ID N 19 Oligonucléotide JCA082 SEQ ID N 20 Oligonucléotide JCA083 SEQ ID N 21 Oligonucléotide JCA084 SEQ ID N 22 Oligonucléotide JCA085 SEQ ID N 23 Oligonucléotide PB088 SEQ ID N 24 Oligonucléotide PB089 SEQ ID N 25 Oligonucléotide JCA086 SEQ ID N 26 Oligonucléotide JCA087 SEQ ID N 27 Oligonucléotide JCA088 SEQ ID NO 28 Oligonucléotide JCA089 SEQ ID NO 29 Oligonucléotide JCA090 SEQ ID NO 30 Oligonucléotide JCA091 2. EXEMPLES Toutes les constructions de plasmides ont été réalisées en utilisant les techniques standards de biologie moléculaire décrites par Sambrook J. et ai. (Molecular Cioning: A Laboratory Manual. 2nd Edition. Cold Spring Harbor Laboratory. Cold Spring Harbor. New York. 1989). Tous les fragments de restriction utilisés pour la présente invention ont été isolés en utilisant le kit "Geneclean" (Bl0101 Inc. La Jolla, CA). Le virus utilisé comme virus parental est la souche F205 (appelée aussi souche Carmichael) de l'herpèsvirus canin. Cette souche a été obtenue du Dr. L. Carmichael (Cornell University, NY) qui l'a isolée et a décrit ses caractéristiques biologiques (Proc. Soc. Exp. Biol. Med. 1965. 120. 644-650). Les conditions de culture de ce virus sont les suivantes : des cellules MDCK (Madin Darbey Canine Kidney ATCC CCL34), cultivées en milieu minimum essentiel de Eagle (milieu "MEM) sont inoculées avec la souche CHV F205 en utilisant une multiplicité d'infection de 1. Les cellules infectées sont alors incubées à 370C pendant environ 36 heures, jusqu'à apparition d'un effet cytopathique complet. Exemple 1: Extraction de l'ADN de l'herpèsvirus canin: Après culture, le surnageant et les cellules lysées sont récoltés et la totalité de la suspension virale est centrifugée à 1000 g pendant 10 minutes à + 40C pour éliminer les débris cellulaires. Les particules virales sont alors récoltées par ultracentrifugation à 400000 g pendant 1 heure à + 40C. Le culot est repris dans un volume minimum de tampon (Tris 10 mM, EDTA 1 mM). Cette suspension virale concentrée est traitée par la protéinase K (100,ug/ml final) en présence de sodium dodecyl sulfate (SDS) (0,5% final) pendant 2 heures à 37 OC. L'ADN viral est ensuite extrait avec un mélange de phénol/chloroforme, puis précipité avec 2 volumes d'éthanol absolu. Après une nuit à - 200 C, I'ADN précipité est centrifugé à 10000 g pendant 15 minutes à + 40C. Le culot d'ADN est séché, puis repris dans un volume minimum d'eau ultrapure stérile. Exemple 2: Clonage et caractérisation de la région CHV COL1 - COL5 L'ADN génomique purifié de la souche F205 du virus CHV a été digéré avec les enzymes de restriction Scal et Xhol et le fragment Scal-Xhol d'environ 6200 pb a été cloné dans le vecteur pBlueScript SKII+ (Stratagene Ref. 212205), préalablement digéré par Scal et Xhol, pour donner le plasmide pPB154. Le fragment Xhol-Scal cloné dans le plasmide pPB154 a été entièrement séquencé sur les deux brins pour générer la séquence de 6216 pb de la figure 1 (SEQ ID N 1). Plusieurs cadres ouverts de lecture de taille supérieure à 65 acides aminés ont été identifiés sur cette séquence (Figure 1): Le premier cadre de lecture (COL1) (positions 1353 - 157) se trouve sur le brin complémentaire et code pour un polypeptide de 398 acides aminés (SEQ ID NO 2). Le deuxième cadre de lecture (COL2) (positions 1708 - 2970) code pour un polypeptide de 420 acides aminés (SEQ ID N 3). Le troisième cadre de lecture (COL3) (positions 3040 - 4242) code pour un polypeptide de 400 acides aminés (SEQ ID N 4). Le quatrième cadre de lecture (COL4) (positions 4374 - 5753) code pour un polypeptide de 459 acides aminés (SEQ ID N 5). Le cinquième cadre de lecture (COL5) (positions 5872 - 6216) est incomplet et code pour un protéine tronquée de il 5 acides aminés (SEQ ID N 6). Les différents cadres ouverts de lecture sont rassemblés dans le tableau ci-dessous Cadre Cadre ouvert de Début - Fin Taille en acides lecture (positions sur figure 1) aminés COL 1 1353 - 157 398 aa COL2 1708 - 2970 420 aa COL 3 3040-4242 400 aa COL 4 4374 - 5753 459 aa COL 5 5872 - 6216 115 aa Exemple 3 : Construction du plasmide pPB200 pour l'insertion de cassettes d'expression dans le site CHV COL3 (Figure 2) Le plasmide pPB1 54 (9121 pb) (exemple 2) a été digéré par Hindlil et Spel pour isoler le fragment Hindîlî-Spel de 620 pb (fragment A). Le plasmide pPB154 a été digéré par EcoRI et Spel pour isoler le fragment EcoRI-Spel de 659 pb (fragment B). Les fragments A et B ont été ligaturés ensemble avec le vecteur pGEM4Z (Promega Ref. P21 61), préalablement digéré par EcoRI et Hindlil, pour donner le plasmide pPB199 (4096 pb). Le plasmide pPB199 a ensuite été digéré par Spel, traité par la phosphatase alcaline, puis ligaturé avec le site multiple de clonage, obtenu par hybridation des 2 oligonucléotides suivants: JCA070 (33 mer) (SEQ ID NO 7) 5' CTAGTCCAGCAAGGTGGATCGATATCGGGCCCA 3' JCA071 (33 mer) (SEQ ID NO 8) 5' CTAGTGGGCCCGATATCGATCCACCTTGCTGGA 3' pour donner le plasmide pPB200 (4129 pb). Exemple 4: Construction du plasmide pPB202 pour l'insertion de cassettes d'expression dans le site CHV COL5 (Figure 3) La séquence du gène CHV COL5 a été publiée récemment (Limbach K. et ai. J. Gen. Virol. 1994. 75. 2029-2039). Une réaction PCR a été réalisée avec l'ADN génomique du virus CHV souche F205 (exemple 1) et avec les oligonucléotides suivants: JCA072 122 mer) (SEQ ID NO 9) 5' CAGCTTTATGTTTTTATTGTTC 3' JCA073 (29 mer) (SEQ ID NO 10) 5'AAAGAATTCTACAACTGTTTAATAAAGAC 3' pour obtenir un fragment PCR de 751 pb contenant le gène CHV ORF2 complet. Ce fragment a été digéré par Bgill et EcoRI pour isoler un fragment Bglll-EcoRI de 709 pb. Ce fragment a été ligaturé avec le vecteur pGEM4Z (Promega Ref. P2161), préalablement digéré par EcoRI et BamHI, pour donner le plasmide pPB201 (3559 pb). Le plasmide pPB201 a ensuite été digéré par Scal et Pvull, puis ligaturé avec un site multiple de clonage obtenu par hybridation des 2 oligonucléotides suivants: JCA074 (36 mer) (SEQ ID NO 11) 5 'ACTCCAGCTACATGGGATATCGGGCCCATCGATCAG 3' JCA075 (36 mer) (SEQ ID N 12) 5'CTGATCGATGGGCCCGATATCCCATGTAGCTGGAGT 3' pour donner le plasmide pPB202 (3395 pb). Exemple 5: Construction du plasmide pPB204 pour l'insertion de cassettes d'expression dans le site CHV TK (Figure 4) La séquence du gène CHV thymidine kinase (TK) a été publiée récemment (M. Rémond M. et ai. Virus Research. 1995. 39. 341-354). Une réaction PCR a été réalisée avec I'ADN génomique du virus CHV souche F205 (exemple 1) et avec les oligonucléotides suivants: JCA076 (35 mer) (SEQ ID Nu 13) 5' AG CGTTAACCTCAAAAGCCAAATTTACACTTCCCG 3' JCA077 (38 mer) (SEQ ID Nu 14) 5' CC CAAG CTTTTCTAAAG CCCATTTATAAATAATAAATG 3' pour obtenir un fragment PCR de 1030 pb contenant le gène thymidine kinase (TK). Ce fragment a été digéré par Hpal et Híndlil pour isoler un fragment HpalHindîll de 1019 pb. Ce fragment a été ligaturé avec le vecteur pSP73 (Promega Ref. P2221), préalablement digéré par EcoRV et Hindlil, pour donner le plasmide pPB203 (3423 pb). Le plasmide pPB203 a ensuite été digéré par EcoRI et Styl, puis ligaturé avec un site multiple de clonage, obtenu par hybridation des 2 oligonucléotides suivants: JCA078 (36 mer) (SEQ ID N 15) 5' AATTCCCAGCTACATGGGATATCGGGCCCATCGATC 3' JCA079 (36 mer) (SEQ ID N 16) 5'CAAGGATCGATGGGCCCGATATCCCATGTAGCTGGG 3' pour donner le plasmide pPB204 (3399 pb). Exemple 6: Construction du plasmide pPB206 pour l'insertion de cassettes d'expression dans le site situé entre les gènes CHV orf19 et orf22 (Figure 5) La séquence de la région intergénique correspondant à la délétion naturelle des gènes codant pour la grande sous-unité (gène "RR1") et pour la petite sousunité (gène "RR2") de la ribonucléotide réductase a été publiée récemment (Rémond M. et ai. J. Gen. Virol. 1996. 77. 37-48). Selon la nomenclature utilisée par Rémond et ai., la délétion de ces deux gènes se trouve entre les cadres ouverts de lecture dénommés CHV "orf19" et CHV "orf22"). Une réaction PCR a été réalisée avec l'ADN génomique du virus CHV souche F205 (exemple 1) et avec les oligonucléotides suivants: JCA080 (36 mer) (SEQ ID NO 17) 5 ' G GAGATCTAGTAAATTAAATAGTAATTCATTTAATG 3' JCA081 (33 mer) (SEQ ID NO 18) 5'CAGTCGCGAAGATGAAAATAAAATCCATCGAAG 3' pour obtenir un fragment PCR de 720 pb contenant la région intergénique correspondant à la délétion naturelle des gènes CHV "orf19" et "orf22". Ce fragment a été digéré par Spel et Nrul pour isoler un fragment Spel-Nrul de 709 pb. Ce fragment a été ligaturé avec le vecteur pGEM4Z (Promega Ref. P2161), préalablement digéré par Smal et Xbal, pour donner le plasmide pPB205 (3572 pb). Le plasmide pPB205 a été ensuite digéré par Mfel, puis partiellement digéré par Sspl, afin d'isoler le fragment Mfel-Sspl de 3512 pb. Ce fragment a alors été ligaturé avec un site multiple de clonage, obtenu par hybridation des 2 oligonucléotides suivants: JCA082 (38 mer) (SEQ ID NO 19) 5'AATTGGCAGCTACATG GGATATCGGGCCCATCGATAAT 3' JCA083 (34 mer) (SEQ ID NO 20) 5'ATTATCGATGGGCCCGATATCGGATGTAGCTGGC 3' pour donner le plasmide pPB206 (3548 pb). Exemple 7: Isolement de l'ARN génomique de la souche CDV Onderstepoort et clonage de l'ADN complémentaire codant pour les gènes HA et F La souche CDV Onderstepoort (Mitchell W. et al. J. Virol. Meth. 1987. 18. 121-131) a été cultivée sur cellules MDCK (Madin Darbey Canine Kidney) en milieu DMEM (Gibco). Après purification du virus, L'ART viral génomique a été isolé en utilisant la technique d'extraction au thiocyanate de guanidium/phénolchloroforme (Chomczynski P. et Sacchi N., Anal. Biochem. 1987. 162. 156159). Des oligonucléotides spécifiques (comportant à leurs extrémités 5' des sites de restriction pour faciliter le clonage des fragments amplifiés) ont été synthétisés de telle facon qu'ils couvrent entièrement les régions codantes des gènes devant être amplifiés (respectivement gènes HA et F). La réaction de transcription inverse (RT) et l'amplification en chaîne par polymérase (PCR) ont été effectuées selon les techniques standards (Sambrook J. et ai. 1989). Chaque réaction de RT-PCR a été faite avec un couple d'ampli mers spécifiques et en prenant comme matrice l'ARN génomique viral extrait. L'ADN complémentaire amplifié a été extrait au phénol/chlorof Une réaction PCR a été réalisée avec le plasmide pCMVB et avec les oligonucléotides suivants: PB088 (30 mer) (SEQ ID NO 23) 5'TTGGGTACCGCCTCGACTCTAGGCGGCCGC 3' PB089 (32 mer) (SEQ ID NO 24) 5'TTGGGTACCGGATCCGAAAAAACCTCCCACAC 3' pour obtenir un fragment PCR de 244 pb contenant le signal de polyadénylation du gène précoce du virus SV40. Ce fragment a été digéré par Kpnl pour isoler un fragment Kpnl-Kpnl de 233 pb. Ce fragment a ensuite été ligaturé avec le plasmide pPB207, préalablement digéré par Kpnl, pour donner le plasmide pPB208 (5867 pb). 7.2. Construction de la cassette d'expression CDV F (pPB210) (Figure 7) Le plasmide pCMVB (Clontech Ref. 6177-1) a été digéré par EcoRI et Nofl pour isoler un fragment EcoRI-Notl de 818 pb contenant la région promotrice du ggne immediate-early du cytomégalovirus humain (fragment A). Une réaction RT-PCR a été réalisée avec l'ARN génomique du virus CDV (souche Onderstepoort) et avec les oligonucléotides suivants: JCA086 (34 mer) (SEQ ID NO 25) 5'TTGCGGCCGCATGCACAGGGGAATCCCCAAAAGC 3' JCA087 (28 mer) (SEQ ID NO 26) 5'TTGGTACCTCAGAGTGATCTCACATAGG 3' pour obtenir un fragment PCR de 2011 pb contenant le gène F du CDV. Ce fragment a été digéré par Notl et Kpnl pour isoler un fragment Notl-Kpnl de 2000 pb (fragment B). Les fragments A et B ont été ligaturés ensemble avec le vecteur pGEM-7Zf + (Promega Ref. P2251), préalablement digéré par EcoRI et Kpnl, pour donner le plasmide pPB209 (5808 pb). Une réaction PCR a été réalisée avec le plasmide pCMVB et avec les oligonucléotides suivants: PB088 (30 mer) (SEQ ID NO 23) 5'TTGGGTACCGCCTCGACTCTAGGCGGCCGC 3' PB089 (32 mer) (SEQ ID NO 24) 5'TTGGGTACCGGATCCGAAAAAACCTCCCACAC 3' pour obtenir un fragment PCR de 244 pb contenant le signal de polyadénylation du gène précoce du virus SV40. Ce fragment a été digéré par Kpnl pour isoler un fragment Kpnl-Kpnl de 233 pb. Ce fragment a ensuite été ligaturé avec le plasmide pPB209 préalablement digéré par Kpnl pour donner le plasmide pPB210 (6041 pb). Exemple 8: Construction du plasmide donneur pPB213 pour l'insertion de la cassette d'expression CDV HA dans le site CHV COL3 (Figure 8) Le plasmide pPB208 (exemple 7.1.) a été digéré parApal et Clal pour isoler un fragment Apal-Clal de 2920 pb contenant la cassette d'expression du gène HA du virus CDV. Ce fragment a été ensuite ligaturé avec le plasmide pPB200 (exemple 3), préalablement digéré par Apal et Clan, pour donner le plasmide pPB213 (7043 pb). Ce plasmide permet l'insertion de la cassette d'expresçion du gène CDV HA dans le site CHV COL3. Exemple 9: Construction du plasmide donneur pPB214 pour l'insertion de la cassette d'expression CDV F dans le site CHV COL3 (Figure 9) Le plasmide pPB210 (exemple 7.2.) a été digéré par Apal et Cipal pour isoler un fragment Apal-Clal de 3100 pb contenant la cassette d'expression du gène F du virus CDV. Ce fragment a été ensuite ligaturé avec le plasmide pPB200 {exemple 3), préalablement digéré par Apal et Cipal, pour donner le plasmide pPB214 (7217 pb). Ce plasmide permet l'insertion de la cassette d'expression du gène CDV F dans le site CHV COL3. Exemple 10: Construction du plasmide donneur PB215 pour l'insertion de la cassette d'expression du gène G du virus de la rage dans le site CHV COL3 (Figures 10, 11 et 12) Le plasmide pPBi 99 (exemple 3) a été digéré par Spel, traité par la phosphatase alcaline, puis ligaturé avec le site multiple de clonage, obtenu par hybridation des 2 oligonucléotides suivants: JCA088 (39 mer) (SEQ ID NO 27) 5 'CTAGTCCAGCAAGGTGTCGACGGATCGATATCGGGCCCA 3' JCA089 (39 mer) (SEQ ID NO 28) 5 ' CTAGTGGGCCCGATATCGATCCGTCGACACCTTGCTG GA 3' pour donner le plasmide pPB200' (4135 pb) (Figure 10). Le plasmide pCMVB Selon les modalités techniques déjà décrites pour le virus CDV (exemple 7), I'ARN de la souche ERA du virus de la rage a été extrait et purifié à partir d'une culture de cellules Vero infectées par le virus de la rage. Une réaction RT-PCR a alors été réalisée (voir exemple 7) avec l'ARN génomique du virus de la rage (souche ERA) et avec les oligonucléotides suivants: JCA090 (31 mer) (SEQ ID NO 29) 5'TTGCGGCCGCATGGTTCCTCAGGCTCTCCTG 3' JCAO9î (31 mer) (SEQ ID N 30) 5'TTGGTACCTCACAGTCTGGTCTCACCCCCAC 3' pour obtenir un fragment PCR de 1597 pb contenant le gène G du virus de la rage (brevets FR-A-2 515 685 et EP-A-162 757). Ce fragment a été digéré par Notl et Kpnl pour isoler un fragment Notl-Kpnl de 1586 pb (fragment B). Les fragments A et B ont été ligaturés ensemble avec le vecteur pSP73 (Promega Ref. P2221), préalablement digéré par EcoRI et Kpnl, pour donner le plasmide pPB211 (4852 pb). Une réaction PCR a été réalisée avec le plasmide pCMVB et avec les oligonucléotides suivants: PB088 (30 mer) (SEQ ID N 23) 5'TTGGGTACCGCCTCGACTCTAGGCGGCCGC 3' PB089 (32 mer) (SEQ ID N 24) 6 'TTGG GTACCGGATCCGAAAAAACCTCCCACAC 3' pour obtenir un fragment PCR de 244 pb contenant le signal de polyadénylation du gène précoce du virus SV40. Ce fragment a été digéré par Kpnl pour isoler un fragment Kpnl-Kpnl de 233 pb. Ce fragment a ensuite été ligaturé avec le plasmide pPB211 préalablement digéré par Kpnl pour donner le plasmide pPB212 (5085 pb) (Figure 11). Le plasmide pPB212 a été digéré par EcoRV et SalI pour isoler un fragment EcoRV-Sall de 2664 pb contenant la cassette d'expression du gène G du virus de la rage. Ce fragment a été ensuite ligaturé avec le plasmide pPB200'(voir plus haut), préalablement digéré par EcoRV et Salol, pour donner le plasmide pPB215 (6790 pb) (Figure 12). Exemple 11: Construction du plasmide donneur pPB216 pour l'insertion de la cassette d'expression CDV HA dans le site CHV COL5 (Figure 13) Le plasmide pPB208 (exemple 7.1.) a été digéré par Smal et Apal pour isoler un fragment Smal-Apal de 2909 pb contenant la cassette d'expression du gène CDV HA. Ce fragment a été ensuite ligaturé avec le plasmide pPB202 (exemple 4), préalablement digéré par EcoRV et Apal, pour donner le plasmide pPB216 (6291 pb). Ce plasmide permet l'insertion de la cassette d'expression du gène CDV HA dans le site CHV COL5. i Exemple 12: Construction du plasmide donneur pPB217 pour l'insertion de la cassette d'expression CDV HA dans le site CHV TK (Figure 14) Le plasmide pPB208 (exemple 7.1.) a été digéré par Apal et Cipal pour isoler un fragment de 2920 pb contenant la cassette d'expression du gène CDV HA. Ce fragment a été ligaturé avec le plasmide pPB204 (exemple 5), préalablement digéré par Apal et Ciel, pour donner le plasmide pPB217 (6316 pb). Ce plasmide permet l'insertion de la cassette d'expression du gène CDV HA dans le site CHV TK. Exemple 13: Construction du plasmide donneur pPB218 pour l'insertion de la cassette d'expression CDV HA dans le site situé entre les gènes CHV orf19 et CHV orf22 (Figure 15) Le plasmide pPB 208 (exemple 7.1.) a été digéré parApal et Ciel pour isoler un fragment de 2920 pb contenant la cassette d'expression du gène CDV HA. Ce fragment a été ligaturé avec le plasmide pPB206 (exemple 6), préalablement digéré par Apal et Clal, pour donner le plasmide pPB218 (6462 pb). Ce plasmide permet l'insertion de la cassette d'expression du gène CDV HA dans le site situé entre les gènes CHV orf1 9 et CHV orf22. Exemple 14: Isolement du virus recombinant vCHVO1 contenant la cassette d'expression du gène CDV HA dans le site CHV COL3. Le plasmide pPB21 3 (voir exemple 8) a été linéarisé par digestion avec Hindlil, extrait avec un mélange phénol-chloroforme, précipité avec de l'éthanol absolu, puis repris dans de l'eau stérile. Des cellules MDCK, formant un tapis cellulaire bien établi en boîte de Petii (Corning 4,5 cm de diamètre) ont ensuite été transfectées avec le mélange suivant: 1 zig de plasmide pPB213 linéarisé + 5 pg d'ADN viral de CHV dans 300 pI de milieu MEM et 100 pg de LipofectAMINE (Gibco-BRL Cat&num; 18324-012) dilués dans 300 pi de milieu (volume final du mélange = 600 pI). Ces 600 pl ont été ensuite dilués dans 3 ml (volume final) de milieu MEM et étalés sur 3106 cellules MDCK. Le mélange a été laissé en contact avec les cellules pendant 5 heures, puis éliminé et remplacé par 5 ml de milieu de culture. Les cellules ont alors été laissées en culture pendant 24 heures à + 370C. Après 24 heures à 48 heures de culture, 1 ml de surnageant de culture a été récolté et plusieurs di!utions de ce surnageant ont été utilisées pour infecter de nouvelles cellules MDCK (cultivées en boîte de Petri (Corning 4,5 cm de diamètre) de manière à obtenir des plages isolées, chaque boîte étant infectée avec 1 ml d'une dilution du surnageant initial. Après un contact d'1 heure à 370 C, le milieu d'infection a été éliminé et remplacé par 5 ml de milieu MEM à 1 % d'agarose, maintenu en surfusion à 420 C. Lorsque l'agarose a été solidifiée, les boîtes ont été incubées 48 heures à 370C en étuve CO2 jusqu'à apparition de plages. La couche d'agarose a alors été éliminée et un transfert des plages virales a été réalisé sur une membrane stérile de nitrocellulose de même diamètre que la boîte de Petri ayant servi à la culture. Cette membrane a été elle-même transférée sur une autre membrane de nitrocellulose de manière à obtenir une "copie" inversée du premier transfert. Les plages transférées sur cette dernière copie ont été alors hybridées, selon les techniques usuelles connues de I'homme de l'art, avec un fragment Notl-Notl de 1842 pb du gène CDV HA, obtenu par digestion du plasmide pPB208 (exemple 7.1), marqué à la digoxigénine (DNA Labelling Kit, Boehringer Mannheim, CAT &num; 1175033). Après hybridation, lavages et mise en contact avec le substrat de révélation, la membrane de nitrocellulose a été mise en contact avec un film autoradiographique. Les images d'hybridation positive sur cette membrane ont indiqué quelles étaient les plages qui contenaient des virus CHV recombinants ayant inséré la cassette CDV HA. Les plages correspondant à ces plages positives ont été découpées stérilement sur la première membrane de nitrocellulose, placées dans un tube Eppendorf contenant 0,5 ml de milieu MEM et soniquées pour libérer les virions de la membrane. Le milieu contenu dans le tube Eppendorf a été ensuite dilué en milieu MEM et les dilutions ainsi obtenues ont servi à infecter de nouvelles cultures de cellules MDCK. Un virus recombinant, contenant la cassette HCMV-IE/CDV HA/polyA insérée dans le site COL3, pur à 100 % a été ainsi isolé après 3 cycles de purification et Wété appelé vCHVO1. L'homologie de la recombinaison a été vérifiée par PCR en utilisant des oligonucléotides situés de part et d'autre du site d'insertion. L'absence de remaniement sur le génome du virus recombinant vCHVOî, ailleurs que dans la région de recombinaison, a été vérifiée par la technique du Southern blot. Exemple 15: Isolement de virus CHV recombinants exprimant divers gènes étrangers Selon les modalités décrites dans l'exemple 14, on réalise la construction de différents virus CHV recombinés en utilisant les plasmides donneurs décrits dans les exemples 9 à 13. Exemple 16 : Préparation de vaccins Pour préparer un vaccin, les virus recombinants obtenus aux exemples 14 et 15 sont cultivés sur cellules MDCK. La récolte du virus recombinant se fait lorsque l'effet cytopathique est complet. Les cellules lysées et le surnageant de culture sont recoltés. Après clarification du lysat cellulaire por éliminer les débris cellulaires, la solution virale est titrée. La solution virale est ensuite diluée dans une solution stabilisatrice pour la lyohilisation, répartie à raison d'une dose vaccinale (102 DlCC5O à 107 DICC5O) par flacon, et enfin lyophilisée. La solution virale peut être aussi congelée si nécessaire. Exemple 17 : Méthodes de vaccination Selon le mode préféré de vaccination, le vaccin obtenu selon l'invention est remis en solution ou décongelé, puis administré par voie parentérale ou mucosale, mais de préférence par voie mucosale, notamment orale et/ou nasale. La dose vaccinale sera comprise, de préférence, entre 102 DlCC5O et 107 DlCC5O. De préférence, la dose pour la voie parentérale sera comprise entre 104 DlCC5O et 107 DICC50, et pour la voie orale et/ou nasale, entre 102 DlCC5O et 105 DlCC5O. Tel que défini, le vaccin est efficace en général après une seule administration par voie orale et/ou nasale. Cependant, des administrations répétées peuvent être nécessaires. REVENDICATIONS 1 - Vaccin vivant recombinant comprenant, comme vecteur, un herpèsvirus canin comprenant et exprimant au moins une séquence nucléotidique codant pour un polypeptide, cette séquence étant insérée dans un site non essentiel pour la réplication. 2 - Vaccin vivant recombinant selon la revendication 1, caractérisé en ce que la ou les séquences nucléotidiques sont insérées dans au moins un site choisi parmi le groupe consistant en COL3, COL5, gène thymidine kinase, séquence située entre le COL CHV orf 1 9 et le COL CHV orf22, par insertion simple, ou après délétion totale ou partielle. 3 - Vaccin vivant recombinant selon la revendication 1 ou 2, caractérisé en ce que, pour exprimer la séquence insérée, le vecteur comprend.un promoteur eucaryote fort. 4 - Vaccin vivant recombinant selon la revendication 3, caractérisé en ce que le promoteur fort est un promoteur CMV immediate-early, de préférence le promoteur CMV immediate-early murin ou humain. 5 - Vaccin vivant recombinant selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisé en ce qu'il comprend au moins deux séquences nucléotidiques insérées dans au moins un site sous le contrôle de promoteurs eucaryotes différents. 6 - Vaccin vivant recombinant selon la revendication 5, caractérisé en ce que les promoteurs eucaryotes sont des promoteurs CMV immediate-early d'origines animales différentes. 7 - Vaccin vivant recombinant selon la revendication 5 ou 6, caractérisé en ce qu'il comprend une première séquence nucléotidique associée à un promoteur CMV immediate early et une autre séquence nucléotidique associée à un autre promoteur, les deux promoteurs ayant dans ce cas leurs extrémités 5' adjacentes. 8 - Vaccin vivant recombinant selon l'une quelconque des revendications 1 à 7, caractérisé en ce qu'il comprend une séquence nucléotidique codant pour un polypeptide antigénique d'un agent pathogène canin, cette séquence étant insérée dans l'un des sites. 9 - Vaccin vivant recombinant selon la revendication 8, caractérisé en ce qu'il comprend une séquence codant pour un antigène choisi parmi le groupe des antigènes du virus de la maladie de Carré, du virus de la rage, du parvovirus canin, du virus parainfienza canin, du virus de l'hépatite de Rubarth, de Bordetella bronchiseptica, de Borrella burgdorferi, de Leptospire spp., de Leishmania infantum, cette séquence étant insérée dans l'un des sites. 10 - Vaccin vivant recombinant selon la revendication 9, caractérisé en ce qu'il comprend une séquence nucléotidique, choisie parmi les séquences nucléotidiques codant pour les polypeptides HA et F du virus de la maladie de Carré. 11 - Vaccin vivant recombinant selon la revendication 9, caractérisé en ce qu'ii comprend au moins une séquence nucléotidique choisie parmi le groupe des séquences correspondant au gène G du virus de la rage, au gène VP2 du virus de la parvovirose canine, aux gènes HA et F du virus parainfluenza de type 2, aux gènes OspA et OspB de Borrelia burgdofferi. 12 - Vaccin vivant recombinant selon l'une quelconque des revendications 1 à 11, caractérisé en ce qu'il comprend une séquence nucléotidique codant pour un polypeptide immunomodulateur, cette séquence étant insérée dans l'un des sites. 13 - Vaccin vivant recombinant selon la revendication 12, caractérisé en ce que cette séquence nucléotidique est choisie parmi le groupe des séquences codant pour des cytokines. 14 - Formule de vaccin multivalent comprenant, en mélange ou à mélanger, au moins deux vaccins vivants recombinants tels que définis dans l'une quelconque des revendications 1 à 13, ces vaccins comprenant des séquences insérées différentes. 15 - Fragment d'ADN consistant en tout ou partie de la séquence définie par les positions 583 à 4173 sur la séquence SEQ ID NO 1.