Brevet FR2736064A1 — publié le 19970103

EPITOPES PROTECTEURS DE L'ADENYL CYCLASE-HEMOLYSINE PREVENTION DES INFECTIONS PAR BORDETELLA La présente demande concerne des séquences d'acides aminés comprenant des épitopes de l'adényl cyclase - hémolysine de Bordetella. L'adénylcyclase-hémolysine (AC-Hly) est une des toxines participant au syndrome infectieux de Bordetella. L'AC-Hly est une protéine bifonctionnelle, possédant une activité adényl cyclase et une activité hémolytique. Elle est sécrétée par la bactérie. Son gène de structure a été cloné et séquencé (Glaser P. et al, 1988, Molec. Microb. 2, 19-20). Il s'avère que cette protéine fait partie de la famille des toxines dites RTX pour repeats in toxins et présente des homologies avec l'hémolysine d'Escherichia coli, d'Actinobacillus pleuronneumoniae, les leucotoxines de Pasteurella haemolvtica et d'Actinobacilius actinomvcetemcomitans.Cette protéine, comme la PTX (toxine de pertussis), est capable de pénétrer dans les cellules eucaryotes telles que les macrophages, d'être activée par la calmoduline, de synthétiser de grandes quantités d'AMPc et de perturber les fonctions cellulaires (Coote J. 1992. FEMS Microbiol. Rev. 88:137-162). Les inventeurs ont identifié au sein de cette séquence, différents domaines ayant la capacité d'induire la formation d'anticorps protecteurs contre une infection par Bordetella en particulier par B. pertussis, ou/et B. parapertussis etlou B. bronchiseptica. L'invention a donc pour objet des séquences d'acides aminés susceptibles d'entrer dans la constitution de compositions immunogènes ou de vaccins protecteurs contre des infections à Bordetella ainsi que des anticorps dirigés contre ces séquences d'acides aminés, utilisables par exemple en immunothérapie. L'immunothérapie ou sérothérapie est notamment applicable chez des enfants, le cas échéant chez des nourrissons infectés par B. pertussis, B. Parasertussis ou B. bronchiseptica. L'invention propose des applications en médecine humaine ou en médecine vétérinaire. La présente invention a pour objet une séquence d'acides aminés dérivée de la séquence polypeptidique de l'adenylcyclase-hémolysine (AC Hly), caractérisée en ce qu'elle est capable d'induire la formation d'anticorps protecteurs contre une infection par B. pertussis etlou B. parapertussis etlou B. bronchisePtica et en ce qu'elle est choisie parmi les enchaînements suivants: a) une séquence comprenant l'enchaînement des acides aminés situés approximativement entre la position 910, de préférence 913, et le dernier acide aminé C-terminal de la séquence polypeptidique de l'AC-Hly de B. Dertussis ou d'une séquence correspondant à la précédente chez B. DaraDertussis ou chez B. bronchisentica, ladite séquence comportant une modification par addition d'un acide gras entre les acides aminés 980 environ et 985 environ, de préférence au niveau de l'acide aminé 983; b) une séquence comprenant un enchaînement de 6 à 500 acides aminés comprenant les acides aminés 385 à 400- de la séquence polypeptidique de l'AC-Hly de B. ertussis ou d'une séquence correspondant à la précédente chez B. paraPertussis ou chez B. bronchisentica: c) une séquence comprenant les enchaînements d'acides aminés définis ci-dessus en a) et b), lesdits enchaînements étant soit contigus, soit réunis par l'intermédiaire de l'enchaînement d'acides aminés naturellement présents entre les enchaînements définis ci-dessus en a) et b) au sein de l'AC-Hly de B. pertussis, B. parapertussis, ou B. bronchisePtica, soit réunis par l'intermédiaire d'une séquence antigénique dérivée d'une protéine différente de l'AC-Hly, la séquence d'acides aminés obtenue ayant une conformation tridimensionnelle identique ou analogue à celle de la séquence polypeptidique correspondante de l'AC-Hly de B. pertussis, B. narapertussis ou B. bronchisentica. Par l'expression séquence d'acides aminés dérivée de la séquence polypeptidique de l'AC-Hly , on entend dans le cadre de l'invention, une séquence dont les acides aminés sont identiques par leur nature ou par leur enchaînement, à ceux de la séquence polypeptidique de l'AC-Hly ou sont pour certains d'entre eux substitués, délétés ou ajoutés, de façon telle que les propriétés immunologiques de l'AC-Hly sont conservées. En particulier, une telle séquence, dérivée de la séquence polypeptidique de l'AC-Hly est reconnue par des anticorps formés chez un patient infecté par Bordetella, notamment par B. Pertussis, B. Darapertussis ou B. bronchiseptica. On considérera, dans le cadre de la présente invention, que la structure ou la conformation de l'AC-Hly est conservée, la séquence d'acides aminés de l'invention ayant alors une structure identique ou analogue à celle de l'AC-Hly, lorsque ladite séquence d'acides aminés est capable, après immunisation d'un patient ou d'un animal, d'induire une immunité protectrice contre les infections à Bordetella. Une séquence selon l'invention peut être obtenue par protéolyse de l'AC-Hly purifiée de Bordetella. De préférence, cette séquence est obtenue par synthèse chimique ou par les techniques du génie génétique. Ainsi, pour produire par génie génétique une séquence d'acides aminés selon l'invention, on aura recours à des plasmides portant des fragments du gène CyaA. A titre d'exemple, la synthèse chimique peut être réalisée dans des automates de type Applied Biosystem. On peut aussi mettre en oeuvre la technique de Betsou F. et al, 1993, Infect. Immun., 61:3583-3589. De cette façon, on pourra préparer un peptide correspondant à l'enchaînement des acides aminés 385 à 400, voire 385 à 500 de I'AC-Hly de B. pertussis ou à l'enchaînement correspondant de I'AC-Hly de B. parapertussis ou de B. brnnchiseptica. La séquence d'acides aminés ainsi que la séquence nucléotidique de l'AC-HIy de B. pertussis a été décrite dans Glaser et al, 1988, Molec. Microb. 2-19-30 et est représentée à la figure 5. La séquence d'acides aminés et la séquence nucléotidique de l'AC-Hly de B. bronchisePtica est représentée à la figure b. La séquence d'acides aminés de l'AC-Hly de B. parapertussis et la séquence nucléotidique codant pour l'AC-Hly peuvent être obtenues par les techniques classiques à partir de l'ADN d'une souche de B. DaraDertussis, par exemple la souche n" 1 déposée à la CNCM le 2 Décembre 1994 sous le n" 1-1498. Lorsqu'une séquence d'acides aminés selon l'invention est produite par génie génétique à partir de l'ADN des gènes CyaA de B. pertussis, B. parasertussis ou B. bronchisePtica, et lorsqu'elle comporte l'acide aminé en position 983 de l'AC-Hly de B. pertussis ou un acide aminé correspondant de l'AC-Hly de B. parapertussis ou B. bronchiseptica, on veillera à ce que cette séquence soit produite dans un hôte cellulaire exprimant également le gène CyaC des souches identifiées ci-dessus. L'expression du gène CyaC permet la modification par addition d'un acide gras nécessaire pour conserver à la séquence d'acides aminés comportant le résidu 983. L'addition d'un acide gras peut, à titre d'exemple, être une palmitoylation. Des souches utilisables pour avoir accès aux gènes CyaA et CyaC sont par exemple B. pertussis HAV déposée à la CNCM le 19 Octobre 1994 sous le n" 1-1485, B. Parapertussis 1-1498 et B. brondrisestica 973S déposée à la CNCM le 12 Mai 1989 sous le n" 1-858. Par ailleurs, les séquences nucléotidiques codant pour l'AC-Hly de B. Dertussis et de B. bronchiseptica sont présentées respectivement dans les figures 5 et 6. La séquence nucléotidique du gène CyaC activateur du gène CyaA a été décrite dans la publication de Barry E.M. et al (Journal of Bacteriology, Jan. 1991, p. 720-726). Une séquence intéressante dans le cadre de la présente invention est la séquence correspondant aux régions dites région modifiée et région répétée de l'AC-Hly (voir figure 1). Lorsqu'une séquence antigénique hétérologue par rapport à la séquence polypeptidique de l'AC-Hly est présente, il peut s'agir d'une séquence d'un antigène d'un organisme pathogène bactérien, viral, parasitaire notamment, contre lequel on recherche par exemple la formation d'anticorps protecteurs. Par l'expression anticorps protecteurs contre une infection par B. Dertussis etlou B. Parapertussis etlou B. bronchiseptica, on entend des anticorps protégeant contre les infections létales et sublétales induites par ces bactéries, c'est à dire protégeant contre la maladie et l'infection. Avantageusement, les séquences d'acides aminés selon l'invention capables d'induire la formation d'anticorps protecteurs contre les infections ci-dessus désignées, sont associés à des facteurs impliqués dans la virulence des bordetella, utilisés par exemple sous forme de préparations polypeptidiques ou d'extraits bactériens ayant la capacité d'induire une protection contre la persistance des bactéries chez l'hôte. Une séquence d'acides aminés intéressante dans le cadre de l'invention, est une séquence caractérisée en ce qu'elle est sous la forme d'un polypeptide ayant une conformation tridimensionnelle identique ou analogue à celle de la séquence polypeptidique correspondante de l'AC Hly de B. Dertussis ou de B. parapertussis ou de B. bronchiseptica, en ce qu'elle comprend l'enchaînement d'acides aminés situé entre les positions 900 environ, en particulier 910, et le dernier acide aminé C-terminal environ de la séquence polypeptidique de l'AC-Hly de B. Dertussis ou d'une séquence correspondant à la précédente chez B. paraPertussis ou chez B. bronchisentica, ladite séquence comportant en outre une modification par addition d'un acide gras entre les acides aminés 980 environ et 985 environ, en particulier au niveau de l'acide aminé 983. Cette séquence d'acides aminés comprend la région modifiée et la région répétée de l'AC-Hly. Une autre séquence d'acides aminés préférée selon l'invention est une séquence caractérisée en ce qu'elle est formée par l'enchaînement des acides aminés compris entre l'acide aminé en position 385 environ et environ le dernier acide aminé C-terminal de la séquence polypeptidique de l'AC-Hly de B. Dertussis ou d'une séquence correspondant à la précédente chez B. parapertussis ou chez B. bronchiseptica, ladite séquence comportant une modification par addition d'un acide gras entre les acides aminés 980 environ et 985 environ, de préférence au niveau de l'acide aminé 983. L'invention a également pour objet une séquence d'acides aminés entrant dans le cadre des définitions données précédemment, formée par l'enchaînement des acides aminés compris entre l'acide aminé en position 385 environ et l'acide aminé en position 400 environ de la séquence polypeptidique de l'AC-Hly de B. pertussis ou d'une séquence correspondant à la précédente chez B. parapertussis ou chez B. bronchiseptica. Cette séquence d'acides aminés comprend avantageusement un épitope susceptible d'induire la formation d'anticorps protecteurs contre une infection par des Bordetella de type B. Dertussis, B. parapertussis et B. bronchiseptica. Selon un autre mode de réalisation de l'invention, la séquence d'acides aminés est caractérisée en ce qu'elle est formée par l'enchaînement des acides aminés compris entre l'acide aminé en position 385 environ et l'acide aminé en position 500 environ de la séquence polypeptidique de l'AC-Hly de B. pertussis ou d'une séquence correspondant à la précédente chez B. naranertussis ou chez B. bronchiseptica. Avantageusement, cette séquence comprenant les acides aminés 385 à 400 ou 385 à 500 est présentée dans une conformation identique ou analogue à la conformation qu'elle possède dans la protéine AC-Hly de Bordetella. L'invention a également pour objet des séquences d'acides aminés obtenues par délétion de fragments polypeptidiques à partir de la séquence de l'AC-Hly de Bordetella, qu'il s'agisse de la séquence purifiée à partir de la bactérie, et en particulier à partir de B. Pertussisl B. paranertussis ou B. bronchisePtica ou qu'il s'agisse d'une séquence obtenue à partir d'une protéine recombinante r-AC-Hly. Une séquence d'acides aminés ainsi obtenue est avantageusement la séquence appelée dCla correspondant à l'enchaînement de l'AC-Hly modifié par délétion d'un fragment Cla représenté à la figure 1, correspondant à l'enchaînement des acides aminés 827 à 887 de la séquence polypeptidique de l'AC-Hly de B. Dertussis ou d'une séquence correspondant à la précédente chez B. parapertussis ou chez B. bronchisePtica, la séquence obtenue comportant une modification par addition d'un acide gras entre les acides aminés 980 environ et 985 environ, de préférence au niveau de l'acide aminé 983. Un autre fragment peut être délété de la séquence AC-Hly pour former une séquence d'acides aminés selon l'invention, il s'agit du fragment polypeptidique SH correspondant à l'enchaînement des acides aminés 385 à 827 de la séquence polypeptidique de l'AC-Hly de B. Dertussis ou d'une séquence correspondant à la précédente chez B. narapertussis ou chez B. bronchiseptica, la séquence obtenue comportant une modification par addition d'un acide gras entre les acides aminés 980 environ et 985 environ, de préférence au niveau de l'acide aminé 983. L'invention a aussi pour objet la séquence d'acides aminés formant la région répétée de l'AC-Hly de Bordetella, comprise entre les résidus d'acides aminés 1000 et 1600 environ. La région répétée de B. bronchiseptica comporte une répétion de moins par rapport à l'AC-Hly de B. Dertussis. A cet égard, I'invention concerne par exemple la séquence comprenant les acides aminés 1552 à 1592 de l'AC-Hly de B. pertussis. L'invention concerne aussi les séquences nucléotidiques codant pour les séquences d'acides aminés ci-dessus décrites. Les gènes CyaA, CyaB et partiellement CyaD de B. bronchisentica ont été clonés sur le plasmide pFBD2 hébergé par E. coli K12XL1 et déposé à la CNCM le 21 Juin 1995 sous le n" 1-1601. Le plasmide pFBD2 est obtenu par insertion au site BamHl du fragment de 8kb de B. bronchiseptica portant les gènes CyaA, CyaB et partiellement CyaD. L'invention a par ailleurs pour objet des compositions polypeptidiques comprenant des séquences selon l'invention originaires de différents types de Bordetella. Par exemple, une composition polypeptidique avantageuse comprend une séquence définie précédemment de B. Dertussis et une autre séquence ou plusieurs de ces séquences de B. Parapertussis Une autre composition polypeptidique de l'invention comprend en outre une ou plusieurs séquences de B. bronchisedica. Selon un autre mode de réalisation de l'invention, une composition polypeptidique est caractérisée en ce qu'elle comprend une ou plusieurs séquences définies précédemment de B. parapertussis et une ou plusieurs séquences de B. bronchisePtica L'invention a également pour objet des composition immunogènes caractérisées en ce qu'elles comprennent une ou plusieurs des séquences définies dans les pages précédentes. De façon intéressante pour la protection contre l'infection par des Bordetella et en particulier pour la protection contre la persistance des bactéries chez l'hôte, une composition immunogéne comprenant les séquences d'acides aminés de l'invention peut être caractérisée en ce qu'elle comprend en outre un extrait bactérien contenant les produits d'expression des gènes g d'une souche de Bordetella choisie parmi B. pertussis, B. Darapertussis ou B. bronchiseptica ou une partie de ces produits d'expression, suffisante pour induire une réponse immunitaire chez un hôte auquel l'extrait serait administré. Outre la présence de différentes adhésines et toxines, les Bordetelles sont caractérisées par une régulation de l'expression des facteurs impliqués dans leur virulence. Autrement dit, les Bordetelles subissent des variations et modulations de phase. Les Bordetelles, suivant leur environnement, peuvent devenir "avirulentes" c'est à dire incapables d'induire la létalité, une réaction inflammatoire et des lésions pulmonaires dans le modèle murin d'infection respiratoire. Elles subissent soit une modulation de phase soit une variation de phase. La variation de phase s'observe à une fréquence ailant de 10-3 à 106 et est quasiment irréversible. Elle se traduit par un arrêt de l'expression des toxines et adhésines décrites précédemment et par l'expression d'autres facteurs non encore bien caractérisés (changement des bactéries "virulentes" Phase I en bactéries "avirulentes" Phase IV). Les bactéries de phase I et de phase IV ont été décrites par Lacey B. 1960, J. Hyg, 58:57-93. La modulation de phase, phénotypiquement semblable à la variation de phase est totalement réversible et se traduit par un arrêt de la synthèse des adhésines et des toxines lors de changements environnementaux (composition du milieu de culture température...). La variation de phase et la modulation de phase observées chez Bordetella sont sous le contrôle de deux gènes régulateurs, bvg A et bvg S (Arico B. et al, 1989, Proc. Natl. Acad. Sci USA, 86: 6671-6675). Le gène bvg S code pour une protéine sensible aux conditions extérieures. Cette protéine module par phosphorylation l'activité de la protéine codée par le gène bvgA, qui est d'une part un activateur positif de la transcription des gènes codant pour les facteurs de virulence (gènes vag pour "vir activated genes") cités précédemment (Uhl M. A. And Miller J. 1994. PRoc. Natl. Acad. Sci USA 91:1163-1167), d'autre part un répresseur de la transcription de certains gènes (Beattie D.T. et al, J. of Bacteriology, Jan 93, p. 159-527). Les gènes dont l'expression est réprimée sont appelés gènes vrg pour "vir repressed genes" et sont encore mal caractérisés. II a cependant été montré que le gène vrg 6 de B. Dertussis code pour une protéine ayant un rôle dans la persistance de la bactérie chez l'hôte (Beatties D. et al, 1992, Infect. Imm. 60:571-577). Chez B. bronchiseptica, deux protéines codées par les gènes vrg ont été caractérisées: ce sont des protéines de type flagelles (B. bronchiseptica Phase I est une bactérie immobile ne synthétisant pas de flagelles mais synthétisant adhésines et toxines et B. bronchisePtica Phase IV est une bactérie mobile synthétisant des flagelles). La présence dans la composition immunogène, d'un extrait bactérien comprenant les produits d'expression des gènes vrg permettrait d'améliorer la réponse immunitaire humorale etlou cellulaire obtenue après infection chez les sujets vaccinés et contribuerait également à la protection contre la persistance de la bactérie. L'extrait bactérien dit "extrait bactérien vrg" dont question ci-dessus contient tous les constituants de la membrane externe d'une bactérie de phase IV, c'est à dire d'une bactérie n'exprimant pas les gènes vag, y compris l'endotoxine LPS. Cette endotoxine peut toutefois être éliminée ou détoxifiée. Cet extrait peut être présent sous forme de suspension. Les extraits bactériens vrg auxquels il est fait appel pour réaliser l'invention, sont de préférence des extraits dits extraits urée . Un extrait urée est composé d'un mélange de protéines exprimées à la surface de la bactérie et qui sont séparées de la bactérie après incubation de celle-ci avec de l'urée 5M. L'extrait urée vrg contient, plusieurs protéines non encore caractérisées, les flagelles et le LPS. L'utilisation d'extraits urée permet notamment la réalisation d'un vaccin de moindre coût par rapport à un vaccin qui serait obtenu à partir des protéines contenues dans les extraits, sous forme purifiée. En outre, les inventeurs ont constaté que les extraits urée utilisés peuvent induire une réponse immunitaire cellulaire de type T (lymphoprolifération), se comportant ainsi comme le vaccin cellulaire utilisé jusqu'à ce jour. Au contraire, les compositions exclusivement acellulaires n'induiraient pas de réponse T, réaction qui se produit pourtant en cas d'infection. Les extraits urée vrg sont préparés respectivement à partir des bactéries de phase IV. Le cas échéant, les bactéries de phase IV sont remplacées par des bactéries dont le gène bvgS est muté de façon telle que les bactéries n'expriment que les protéines codées par les gènes vrg. La préparation de ces extraits est décrite en détail dans la partie expérimentaie. Ainsi, I'invention concerne de façon préférée, une composition immunogène comprenant à la fois un extrait urée vag de B. pertussis et un extrait urée vrg de B. pertussis. Une souche de B. Pertussis appropriée pour la préparation de ces extraits est la souche HAV entrant dans le cadre de l'invention et déposée à la CNCM (Collection Nationale de Cultures de Microorganismes à Paris), le 19 Octobre 1994 sous le n" 1-1485. Pour préparer l'extrait urée vag, la souche HAV peut être utilisée directement puisqu'il s'agit d'une souche de phase. En revanche, l'extrait urée vrg est obtenu à partir d'une souche de phase IV dérivée de la souche de phase I par exemple par mutation du gène bvgS de la bactérie ou par culture de ladite souche de phase I dans un milieu contenant uniquement du sulfate de magnésium, de façon à obtenir l'expression des seuls gènes vrg de B. pertussis. De la même manière et le cas échéant pour améliorer la réponse immunitaire chez l'hôte auquel on administrerait la composition immunogène, celle-ci comprend en outre une ou plusieurs adhésines ou toxines de B. pertussis, B. parapertussis ou B. bronchiseptica, choisie(s) parmi la FHA, les AGG ou la PRN et la PTX ou une partie de ces protéines, suffisante pour induire une réponse immunitaire chez un hôte auquel l'extrait serait administré. De manière avantageuse, les séquences d'acides aminés dérivées de la toxine AC-Hly et le cas échéant les protéines exprimées par les gènes VRG sont obtenues à partir de la souche HAV déposée à la CNCM sous le n" 1-1 485. De même, les séquences d'acides aminés de B. narasertussis utilisées dans le cadre de l'invention sont obtenues à partir de la souche n" 1 déposée à la CNCM sous le n" 1-1 498. Par ailleurs, les séquences d'acides aminés de la souche Bronchiseptica utilisées dans le cadre de l'invention peuvent être obtenues à partir de la souche 9735 déposée à la CNCM sous le n" 1-858. Les références données ci-dessus des différentes souches de Bordetella sont indiquées soit pour donner accès à la séquence des protéines et le cas échéant pour reproduire cette séquence par synthèse chimique, soit pour obtenir les séquences d'acides aminés de l'invention par protéolyse des protéines de Bordetella, soit pour donner accès à l'ADN des souches et ainsi permettre la production des séquences d'acides aminés de l'invention par les techniques du génie génétique. L'invention a également pour objet une composition de vaccination comprenant à titre de principe actif une composition immunogène définie ci-dessus, en association avec un véhicule pharmaceutiquement acceptable et le cas échéant avec un adjuvant. L'invention concerne également un procédé de préparation d'anticorps monoclonaux reconnaissant l'AC-Hly de B. Pertussis, et l'AC Hly de B. paraoertussis et l'AC-Hly de B. bronchiseptica comprenant les étapes de: - immunisation d'un animal, par exemple une souris Balb/c avec un peptide comprenant la séquence des acides aminés 385 à 400 de l'AC-Hly de B. Pertussis, l'immunisation étant le cas échéant réalisée au moyen d'administrations répétées du peptide; - fusion des cellules spléniques de l'animal immunisé avec des cellules de myélome pour former un hybridome, - culture de l'hybridome dans des conditions permettant la production d'anticorps; - récupération des anticorps dirigés contre la séquence des acides aminés 385 à 400 de l'AC-Hly de B. pertussis. Le procédé précédemment décrit permet avantageusement, en utilisant pour l'immunisation un antigène spécifique de l'AC-Hly de B. Dertussis d'obtenir des anticorps monoclonaux reconnaissant à la fois l'AC Hly de B. pertussis ainsi que celles de B. parapertussis et de B. bronchiseetica. En outre, de tels anticorps monoclonaux ont de façon intéressante des capacités protectrices vis-à-vis de l'infection d'un hôte humain ou animal par des Bordetella de type B. pertussis, B. parapertussis etlou B. bronchisePtica. Ainsi, les anticorps monoclonaux obtenus par mise en oeuvre du procédé précédemment décrit peuvent être utilisés pour le traitement de patients ou d'animaux infectés par une ou plusieurs des souches de Bordetella choisies parmi B. pertussis, B. paraPertussis ou B. bronchiseotica. De façon générale, I'invention a pour objet des anticorps monoclonaux caractérisés en ce qu'ils reconnaissent la séquence des acides aminés 385 à 400 de l'AC-Hly de B. Dertussis. L'invention a également pour objet des anticorps monoclonaux dirigés contre l'une quelconque des séquences d'acides aminés précédemment décrites. Ces anticorps monoclonaux peuvent être préparés par un procédé analogue à celui qui a été décrit ci-dessus pour les anticorps monoclonaux obtenus contre l'épitope contenu dans la séquence des acides aminés 385 à 400 environ de I'AC-Hly de B. pertussis. Les anticorps de l'invention peuvent être humanisés par exemple en remplaçant la partie hypervariable d'une immunoglobuline humaine n'ayant pas une fonction anticorps, par une région hypervariable d'une immunoglobuline monoclonale obtenue au moyen de la technique décrite ci-dessus. Des techniques permettant d'humaniser les anticorps ont par exemple été décrites par Waldmann T., Juin 1991, Science, vol. 252, p. 1657-1662 ; Winter G. et al, 1993, Immunology Today, vol. 14, N" 6, p. 243-246 ; Carter et al, Mai 1992, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, vol. 89, p. 4285-4289 ; Singer et al, 1er Avril 1993, Journal of Immunology, vol. 150, n" 7, p. 2844-2857. L'invention a également pour objet des sérums polyclonaux tels qu'obtenus par immunisation d'un animal avec une séquence d'acides aminés répondant aux définitions données précédemment et récuparation des anticorps formés capables de reconnaître les séquences utilisées pour l'immunisation. Le cas échéant, I'immunisation comporte l'administration, avec les séquences d'acides aminés, d'un adjuvant. Selon un mode de réalisation particulier de l'invention I'immunisation est réalisée avec une ou plusieurs séquences d'acides aminés et avec une composition immunogène comprenant des antigènes différents de l'AC-Hly. L'invention concerne aussi une composition pharmaceutique comprenant à titre de principe actif, des anticorps monoclonaux selon l'invention. Ces anticorps, en particulier les anticorps dirigés contre la séquence comprenant les acides aminés 385 à 400, peuvent être utilisés comme médicament en immunothérapie chez un hôte infecté par B. pertussis etlou B. parapertussis etlou B. bronchiseptica. Entre également dans le cadre de l'invention un procédé .de détection in vitro d'une infection par une Bordetella notamment par B. pertussis, B. naraPertussis ou B. bronchiseptica, caractérisé en ce que l'on met en contact un échantillon fluide biologique d'un patient ou d'un animal susceptible d'être infecté par Bordetella, avec des anticorps monoclonaux ci-dessus définis ou avec un sérum polyclonal ci-dessus défini et en ce que l'on détecte une réaction immunologique entre lesdits anticorps monoclonaux ou polyclonaux et les bactéries du genre Bordetella lorsqu'elles sont présentes dans l'échantillon. La détection de l'infection par une bactérie du genre Bordetella notamment par B. Pertussis, B. parapertussis, B. bronchiseptica peut également être opérée sur un échantillon d'un fluide biologique d'un patient ou d'un animal par mise en contact de l'échantillon testé avec une séquence d'acides aminés répondant aux définitions ci-dessus, suivie de la détection d'une réaction immunologique entre lesdites séquences d'acides aminés et des anticorps présents dans l'échantillon testé. L'invention concerne aussi une composition pharmaceutique comprenant à titre de principe actif, des séquences nucléotidiques décrites précédemment. L'utilisation des séquences nucléotidiques dans des compositions pharmaceutiques peut être réalisée par référence à la technique décrite par Donnelly et al (Nature Médecine, 1995, vol. 1, n" 6, p. 583-587). FIGURES Figure 1 : Représentation schématique des protéines tronquées de l'AC Hly utilisée : La construction des plasmides et la production des protéines tronquées correspondantes a été décrite dans les publication antérieures de Sebo P. et al, 1991, Gene, 104:19-24 et Sebo P. et al, 1993, Mol. Microb. 9:999-1009. Les nombres placés dans la colonne Mr indiquent les masses moléculaires relatives des toxines, calculées à partir de leurs séquences d'acides aminés déduites. Les nombres qui suivent le symbole A dans le nom du plasmide sont les nombres du premier et du dernier acide aminé des parties délétées du cadre de lecture de cyaA. Les nombres qui suivent le symbole AC représentent les résidus C-terminaux manquants. Les allèles cyaA sont coexprimés avec le gène cyaC sous le contrôle de signaux d'initiation de transcription et de traduction du gène lacZ identique à celui présent sur le plasmide pCACT3 (Betsou F. et al, 1993, Infect. Immun. 61:3583-3589). AC1307 a été produit à partir de pDIA 5240 (pACTJC1307) en présence du gène cyaC exprimé en trans à partir d'un plasmide compatible pPS4C (Betsou F. et al, 1993, Infect. Immun. 61:3583-3589 et Sebo P. et al, 1991, Gene, 104:19-24). Figure 2 : Caractérisation de B. pertussis et de la protéine r-AC-Hly : 200 ng de B. pertussis purifiée et de r-AC-Hly ont été soumis à une électrophorèse sur SDS-PAGE 8-25% et les protéines ont été colorées avec du bleu de Coomassie (A) ou transformées sur une membrane HYBOND C-Super et incubées avec des sérums mélangés anti r-AC-Hly de 20 souris, 22 jours après la vaccination (B) ou avec des anticorps monoclonaux spécifiques de I'AC-Hly de B. nertussis (C) ou un mélange de sérums d'enfants infectés (infections confirmées par culture) (D) ou un sérum de souris infectées par B. pertussis 18323 collecté deux semaines après l'infection (E) ou un sérum de souris infectées par B. pertussis collecté deux mois après l'infection (F). L'immunodétection a été réalisée avec des anticorps anti-souris de lapin marqués avec la péroxydase.Ligne 1: B. nertussis AC-Hly; Ligne 2: r-AC-Hly; Ligne 3: AHR2; Ligne 4: ; Ligne 5: ACla; Ligne 6: AC217; Ligne 7: AC1307. les nombres indiquent les marqueurs de poids moléculaire. Figure 3 : Inhibition des activités adénylate cyclase (A), hémolytique (B) et cytotoxique (C) de l'AC-Hly de B. pertussis par des antisérums dirigés contre des fragments de la r-AC-Hly obtenus chez différentes souris et par des sérums de souris et d'enfants infectés par B. Dertussis: I'AC-Hly a été incubée avec différents sérums comme décrit dans la partie matériels et méthodes. Les barres indiquent la déviation standard (n=4). Figure 4 : Activités protectrices de la r-AC-Hly et de ses protéines tronquées. Des souris âgées de 3 à 4 semaines ont été immunisées deux fois, à deux semaines d'invervalles, avec 15 g de r-AC-Hly (A ACla (A- #), #C1307 (A-A), ou AHR2 (#-#), AC217 g-n,bH (o-o) ou B. pertussis AC-Hly ((O-O) adsorbées sur l'hydroxide d'aluminium, ou avec un tampon contenant de l'hydroxide d'aluminium seul comme contrôle (i-i). Elles sont infectées par voie intranasale deux semaines plus tard avec 105 CFU de B. pertussis 18323. Les courbes montrent la déviation géométrique standard (barres) pour six souris par point. Figure 5 : Séquence nucléotidique du gène codant pour l'AC-Hly de B. Dertussis et séquence d'acides aminés correspondante. Figure 6 : Séquence nucléotidique du gène codant pour l'AC-Hly de B. bronchisentica et séquence d'acides aminés correspondante. EXEMPLES MATERIELS ET METHODES Souches bactériennes. plasmides et conditions de croissance: La souche virulente B. pertussis 18323 (ATCC 9797) a été cultivée sur un milieu d'agar Bordet Gengou complété avec 15% de sang de mouton défibriné (BG) à 36"C pendant 72 heures et à nouveau pendant 24h. Des sous-cultures dans un milieu liquide ont été effectuées dans un milieu Stainer-Scholte (Stainer D.W. et Scholte M.J., 1971, J. Gen. Microb., 63:211-220) pendant 20 h à 36"C jusqu'à obtenir une densité optique à 650 nm due1,0 (D.O.620=1 .0.). Les plasmides utilisés pour la production de la protéine recombinante r-AC-Hly et de ses dérivés tronqués dans E. coli ont été décrits dans les publications suivantes : (Betsou F., P. Sebo, et N. Guiso, 1993, CyaC-mediated activation is important not only for toxic but also for protective activities of Bordetella pertussis adenylate cyclase-hemolysin, Infect. Immun. 61:3583-3589 ; Iwaki M., Ullmann A. et P. Sebo, 1995, Oligomerization of the adenylate cyclase toxin of Bordetella ertussis Evidence from in vitro complementation of individually inactive mutants . Submitted.; et Sebo P., P. Glaser, H. Sakamoto et A. Ullmann, 1991, High Level synthesis of adenylate cyclase toxin of Bordetella Pertussis in a reconstructed Escherichia coli system, Gene 104: 19-24. Les plasmides permettent la production des différentes protéines (figure 1) en présence de la protéine activatrice CyaC. Des souches E. coli XL-1 Blue (Stratagène) comportant les plasmides respectifs ont été cultivés à 37"C sur un milieu 2xYT contenant 100 lug/L ampicilline à une densité optique D.O.soo de 0,5 à 0,7, et induits pour obtenir la production de l'AC-Hly par de l'lPTG (1mM) pour quatre heures supplémentaires (Betsou F., P. Sebo, et N. Guiso, 1993, Infect. Immun. 61:3583-3589). Tests des activités adenvlate cyclase. hémolvtisue et cvtotoxique L'activité adénylate cyclase a été mesurée selon le protocole décrit par Ladant D., C. Brezin, I. Crenon, J.M. Alonso, et N. Guiso, (1987, Bordetella pertussis adenylate cyclase: purification, characterization and radioimmunoassay, J. Biol. Chem. 261:16264-16269). Une unité (U) d'activité adénylate cyclase correspond à 1 nmol de cAMP formé par minute à 30"C à pH 8,0. Les activités hémolytiques et cytotoxiques de l'AC-Hly ont été déterminées à 37"C, en utilisant des érythrocytes lavés de mouton (109/ml) selon la description de Bellalou J., H. Sakamoto, D. Ladant, C. Geoffroy et A. Ullmann, (1990, Deletions affecting hemolytic and toxin activities of Bordetella Dertussis adenylate cyclase. infect. Immun. 58: 3242-3247). Les concentrations en protéines ont été déterminées par la méthode de Bradford (A rapid and sensitive method for the quantification of micrograms of protein, utilising the principle of proteindye binding. Anal. Biochem. 72:248-257). Tests d'inhibition de l'adénvlate cyclase L'AC-Hly purifiée de B. pertussis a été incubée à 100 U/ml dans 50 mM Tris-HCI à pH 7,6, avec 0,2 mM de Cacl2 et 0,1 NP40 avec différents sérums dilués 100 fois pendant 18 à 20 h à 4"C , I'activité adénylate cyclase post incubatoire (IA) des échantillons a été mesurée. L'activité AC (adénylate cyclase) après incubation avec le sérum de souris immunisées avec de l'hydroxide d'aluminum uniquement (CA) a été prise comme référence d'activité 100% (autrement dit 0% d'inhibition). Le pourcentage d'inhibition de l'activité AC a été calculé comme suit: % d'inhibition = 100% - (100% x IA/CA). Tests d'inhibition de l'activité hémolvtiaue Une unité U de toxine et Spl des différents sérums ont été mélangés dans 1ml de Tris-HCL 10 mM à pH 8, avec 2mM de CaCI2, 150 mM de NaCI et 1pM de calmoduline bovine de cerveau et préincubés pendant 20 min à 4"C. Des érythrocytes lavés de mouton (109) ont été ajoutés et l'activité hémolytique restante a été déterminée après incubation pendant 3 h à température ambiante. Les érythrocytes non lysés ont été récupérés sous forme d'un culot après centrifugation à 2000 RPM et la densité optique de l'hémoglobine libérée (RH) dans les surnageants a été mesurée à 541 nm.L'activité hémolytique de la toxine incubée avec du sérum de souris immunisées uniquement avec l'hydroxide d'aluminium (CH) a été prise comme référence d'activité 100% (0% d'inhibition). Les érythrocytes de mouton incubés sans la toxine ont été utilisés comme contrôle de la lyse non-spécifique. Le pourcentage d'inhibition de l'activité hémolytique a été calculé comme suit : % d'inhibition = 100% - (100%xRH/CH). Tests d'inhibition de l'activité cytotoxique Une unité U de toxine et 5 ,ul de différents sérums ont été préincubés à 4"C pendant 20 minutes dans un volume total de 1 ml de Tris-HCL 10 mM à pH8, avec 2mM CaCI2, 150 mM NaCI, 5mM Glucose, 1 mg/ml BSA et 11uM de calmoduline bovine de cerveau. Puis 109 érythrocytes lavés de mouton ont été ajoutés et l'incubation a été poursuivie à 37"C pendant 30 minutes. Pour arrêter l'activité de la toxine 50cul de suspension d'érythrocytes ont été injectés dans 1 mI d'acétate de sodium 50mM à ébullition à pH 5,2 et chauffés à 100"C pendant 5 min. La quantité de cAMP formée dans les érythrocytes lysés (IT) a été déterminée par une méthode ELISA standard (Pradelles P. Grassi J. Chabardes D. Guiso N. 1989, Analytical Chemistry, 61:447-450). La toxine incubée à 4"C a été utilisée comme contrôle négatif de la cytotoxicité. L'activité de la toxine incubée avec le sérum de souris immunisées avec 'hydroxyde d'aluminium seulement (CT) a été considérée comme étant l'activité 100% (0% d'inhibition). Le pourcentage d'inhibition de l'activité cytotoxique a été calculé comme étant: % d'inhibition = 100% - (100%xlT/CT). Méthodes d'électrophorèse et d'immunoblottinq Une électrophorèse SDS-PAGE a été réalisée avec un gel de polyacrylamide 8-25% prêt à l'utilisation pour le système PhastSystem (Pharmacia) et les protéines séparées ont été électrotransférées à partir des gels de polyacrylamide vers des membranes Hybond C-Super (Amersham). Après blocage, les membranes ont été incubées à une dilution de 10-3 avec des sérums polyclonaux à 4"C pendant toute la nuit. La détection immunochimique a été réalisée en utilisant des immunoglobulines de mouton anti-souris marquées à la peroxydase de raifort et un système de chimioluminescence amélioré (ECL-Amersham). Production et purification de l'AC-HIv L'AC-Hly de B. pertussis, la r-AC-Hly (AC-Hly recombinante) produite à partir de E. coli et les différentes protéines tronquées recombinantes ont été extraites de bactéries avec de l'urée et purifiées sur des colonnes d'affinité à la calmoduline selon la méthode décrite par Guiso N., M. Szatanik et M. Rocandourt (1991, Protective activity of Bordetella adenylate cyclase against bacterial colonization. Microb. Pathog. 11:423431). Les préparations enzymatiques ont été conservées dans de l'urée 8M avec du Tris-HCL 50 mM à pH 8, avec 0,2 mM CaCI2, à -20 C. Toutes les préparations ont été analysées pour déterminer leur degré de pureté par électrophorèse sur gel de polyacrylamide SDS (SDS-PAGE). Immunisation active Les préparations purifiées de r-AC-Hly et des protéines tronquées ont été adsorbées à 60,ug/ml sur de l'hydroxide d'aluminium (250 ,ug/ml). Pour réaliser une immunisation active, des souris Balb/c femelles âgées de 3 à 4 semaines (CERJ, St Berthevin, France) ont été traitées par injection par voie sous cutanée de 15 pg d'antigènes protéiques deux fois, à deux semaines d'intervalle. Les témoins ont reçu uniquement du tampon avec de 'hydroxyde d'aluminium. Les souris ont ensuite été saignées une semaine suivant la dernière injection, de façon à permettre l'accès aux anticorps circulant présents. L'infection respiratoire sublétale a été réalisée deux semaines après la deuxième immunisation. Infection intranasale des souris La souche B. pertussis a été cultivée sur un milieu Bordet Gengou BG pendant 48h selon la description précédente et les bactéries ont été resuspendues dans 1% de casaminoacides. Des quantités sublétales ont été administrées par injections intranasales de 50wu1 des suspensions bactériennes. Les souris infectées ont été sacrifiées par dislocation cervicale 1 heure après l'exposition (à un moment désigné par Jour 0 ) et à différents jours après le jour 0 (6 souris lors de chaque étape). Les poumons ont été prélevés de façon asseptique et homogénéisés dans du sel avec un broyeur de tissus.Des dilutions des préparations homogènes de poumon ont été échantillonnées sur un milieu BG et des unités formant des colonies (cfu) ont été comptées après 3 jours d'incubation à 36"C. Toutes les expériences ont été réalisées au moins 2 fois et ont donné des résultats cohérents. Préparation des sérums immuns Pour obtenir les sérums des souris infectées, 10 souris Balb/c fermelles (âgées de 4 semaines) ont été infectées par voie intranasale avec 2x105 bactéries virulentes B. Dertussis selon la technique décrite par Guiso N. Rocancourt, M. Szatanik et J.M. Alonso, (1989, Bordetella adenylate cyclase is a virulence associated factor and a protective antigen, Molec. Pathog. 7:373-380). Les souris ont été saignées 14 jours après l'infection ou à différents jours indiqués suivant ces 14 jours. Les sérums polyclonaux de souris dirigés contre les dérivés tronqués de l'AC-Hly ont été collectés une semaine après la seconde injection faite aux souris avec chacun des antigènes considérés. Le sérum de patients infectés a été préparé par réalisation d'un mélange de sérums immuns polyclonaux de 10 enfants non vaccinés sélectionnés, infectés par B. pertussis. Ces enfants étaient âgés de plus de 8 mois, pour exclure chez eux la présence d'anticorps maternels, et âgés de moins de 2 ans de façon à être certains de leur passé clinique. RESULTATS Propriétés immunoloqiques de la protéine r-AC-Hlv et de ses variants tronqués II a été montré par le passé que la modification de l'AC-Hly intervenant grâce à l'intermédiaire de la protéine CyaC de B. nertussis est essentielle pour son activité protectrice (Betsou et al, CyaC-mediated activation is important not only for toxic but also for protective activities of Bordetella pertussis adenylate cyclase-hemolysin, Infect. Immun, 61:3583 3589). 11 était donc important de déterminer si cette modification contribuait elle-même à la formation de l'épitope protecteur dans sa forme linéaire ou si cette modification induisait une modification conformationnelle dans la toxine, modification requise pour la présentation des épitopes protecteurs. Aussi, les propriétés immunologiques et protectrices d'un certain nombre de protéines tronquées ont-elles été examinées ; les protéines tronquées en question sont représentées schématiquement à la figure 1. Ces protéines ont été produites dans E. coli en présence de la protéine CyaC en utilisant les plasmides pCACT ou pDIA afin de permettre l'acylation par CyaC au moyen des chaînes d'acides gras, des constructions comportant le site de modification. Comme le montre la figure 2A, les préparations purifiées de toutes les protéines contenaient un polypeptide majeur correspondant au poids moléculaire attendu. Ces protéines ont été contrôlées par un test en Western Blot pour vérifier leur reconnaissance par différents sérums. Comme le montre la figure 2B, le sérum produit contre la protéine r-AC-Hly reconnaissait la protéine r-AC Hly et reconnaissait aussi la protéine AC-Hly purifiée à partir de B. pertussis ainsi que toutes les formes tronquées dérivées de r-AC-Hly. Conformément à la figure 2A, les préparations polypeptidiques purifiées comprenant la longueur totale de la protéine, en d'autres termes les préparations de AC-Hly, r-AC-Hly et les polypeptides tronqués ACla et AC217, contenaient également plusieurs fragments reconnus par un sérum polyclonal obtenu contre la protéine purifiée r-AC-Hly (figure 2B). Des anticorps monoclonaux (figure 2) préparés spécifiquement contre le domaine adénylase-cyclase de l'AC-Hly reconnaissaient également ces fragments de l'AC-Hly, ACla et AC217, montrant que ces fragments étaient des fragments protéolytiques tronqués dans la partie C-terminale et contenant le domaine AC qui co-purifiait avec l'AC-HIy sur calmodulineagarose.Cependant, I'anticorps monoclonal ne reconnaissait pas les protéines AH ou AHR2 qui étaient dépourvues des résidus 385 à 828 et 1489 à 1706 respectivement, mais cet anticorps reconnaissait la protéine AC1307. En utilisant notamment ces observations, les inventeurs ont établi que la région de la molécule localisée entre les acides aminés 385 et 400 participait à la formation d'un épitope. De façon tout à fait remarquable et au contraire de ce qui pouvait se passer avec le sérum anti-r-AC-Hly, les sérums obtenus chez des enfants infectés et utilisés en mélange n'ont pas reconnu le domaine AC de l'AC Hly (AC1307 , ligne 7), et n'ont pas reconnu non plus la protéine dépourvue des 217 résidus terminaux de l'AC-Hly (AC217 ; ligne 6), ni la protéine contenant les derniers 217 résidus mais dépourvue des régions hydrophobes, modifiée et de la majeure partie de la région répétée de l'AC-Hly (air2, ligne 3). Cependant ces sérums humains reconnaissaient l'AC-Hly de B. pertussis et la r-AC-Hly (figure 2D, lignes 1 et 2) et les deux protéines tronquées possédant des régions modifiée et répétée (derniers 900 résidus) de l'AC-Hly (figure 2D, lignes 4 et 5). Un schéma de reconnaissance identique (figure 2E) a été obtenu avec le sérum de souris infecté avec B. Dertussis 18323 (souche de référence) et collecté rapidement après l'infection (14 jours). Les sérums collectés longtemps après l'infection (35 jours) reconnaissaient la partie C-terminale de l'AC Hly présente sur la protéine dHR2 (figure 2F, ligne 3), alors qu'ils continuaient de ne pas reconnaître le domaine AC (figure 2F, ligne 7) et la protéine Au217 dépourvue uniquement des 217 derniers résidus (figure 2F, ligne 6).Ces résultats suggèrent fortement que les anticorps anti-AC Hly synthétisés après l'infection par B. Dertussis sont de façon prédominante dirigés contre la région C-terminale comportant la région modification et la région répétée de I'AC-Hly (derniers 900 résidus). De plus, ni la protéine AC217 dépourvue des derniers 217 résidus de AC-Hly, ni la protéine AHR2 qui contenait les derniers 217 résidus n'ont été reconnus par les sérums immuns et murins suggérant ques ces sérums polyclonaux reconnaissent une structure particulière de la région répétée de l'AC-Hly, structure qui est abolie par l'une quelconque des deux délétions non chevauchantes. II est important de remarquer que les sérums de patients ou de souris infectés reconnaissaient seulement les polypeptides s'étendant sur la longueur complète de la protéine (AC-Hly, r-AC-Hly, ACla et AH) mais pas leurs fragments protéolytiques. L'absence de reconnaissance par ces sérums des produits de protéolyse, qui contiennent le domaine AC et sont clivés dans leur partie C-terminale (voir plus haut la figure 2C), indique en outre que la région de modification et la région répétée de l'AC-Hly (900 derniers résidus) doivent être intactes pour être reconnues par ces sérums. Inhibition des activités adénylate cyclase. hémolvtigue et cytotoxigue par des sérums dirigés contre des dérivés tronqués de l'AC-HIv On a recherché si des sérums de souris infectées par B. pertussis ou des sérums de patients humains infectés par B. Dertussis ou encore des sérums polyclonaux dirigés contre les différentes formes tronquées de la r AC-Hly, obtenus par immunisation avec les protéines tronquées purifiées, pouvaient inhiber spécifiquement l'une des activités de la toxine. Comme un contrôle préalable à ces expériences était nécessaire, les titres ELISA des différents sérums ont été déterminés en utilisant la r-AC-Hly complète comme antigène de coating pour ces tests.Ces titres étaient similaires, à l'exception du titre obtenu avec le sérum anti-A C1307 qui ne reconnaissait pas I'AC-Hly en ELISA bien qu'il l'ait reconnu dans un test Western Blot comme les autres sérums. Comme le montre la figure 3A, I'activité adénylate cyclase a été inhibée par tous les sérums obtenus après immunisation de souris avec de la r-AC-Hly purifiée et avec des protéines dérivées tronquées. Cependant, aucun des sérums des souris infectées ni des patients humains infectés n'inhibait l'activité AC de l'AC-HIy dans des conditions identiques. Ceci est en accord avec le résultat obtenu par l'analyse Western blot (voir plus haut) montrant que ces sérums contiennent des anticorps dirigés de façon prédominante contre la partie C-terminale de l'AC-Hly (derniers 900 résidus) et non contre le domaine AC.En effet, l'activité hémolytique de la protéine AC-Hly était inhibée par les sérums d'enfants infectés et l'était moins fortement par les sérums de souris infectées. Cependant, une forte inhibition de l'activité hémolytique était observée avec des antisérums obtenus par immunisation avec les protéines AC-Hly, r-AC-Hly, AH, ACla et AHR2 de B. Dertussis (figure 3B). Cette inhibition était probablement due à la présence d'anticorps spécifiques contre la partie C-terminale de AC-Hly. En fait, le sérum anti AC1307 dirigé contre le domaine AC de l'AC-HIy qui était dépourvu de tels anticorps n'inhibait pas l'activité hémolytique de AC-Hly. De façon tout à fait intéressante, le sérum dirigé contre la protéine Au217 dépourvue uniquement des 217 derniers résidus n'inhibait pas non plus l'activité hémolytique de l'AC-Hly à un niveau mesurable. Ceci indique que les 217 derniers résidus sont soit la cible des anticorps neutralisants ou soit impliqués dans la formation d'une structure qui favorise la synthèse d'anticorps neutralisants dirigés contre d'autres parties de AC-Hly. Ensemble, ces résultats indiquent en outre que les anticorps synthétisés après l'infection sont principalement dirigés contre la partie hémolysine Cterminale de AC-Hly et sont capables de neutraliser l'activité hémolytique de cette protéine mais pas l'activité enzymatique de son domaine adénylate cyclase N-terminal. Comme le montre la figure 3C, une inhibition significative de l'activité cytotoxique de l'AC-Hly a été observée avec des sérums obtenus contre l'AC-Hly intacte et contre les protéines tronquées AH, ACla et AHR2 qui contiennent toutes à la fois le domaine AC et les 217 derniers résidus. Les anti sérums ont aussi neutralisé les activités AC et hémolytiques.Au contraire, les 2 sérums qui inhibaient soit l'activité hémolytique seule (par exemple, les sérums de souris ou de patients infectés) soit l'activité AC seule (les sérums anti-AC1306 et anti-AC217, n'ont pas inhibé l'activité cytotoxique de l'AC-Hly. Ainsi, il apparaît que la présence des anticorps contre le domaine AC et contre les 217 derniers résidus de l'AC-Hly peut être requise pour neutraliser son activité cytotoxique. Activité protectrice des différentes constructions d'AC-HIv recombinantes Pour localiser les épitopes de l'AC-Hly requis pour obtenir une activité protectrice, l'activité protectrice de différentes protéines tronquées purifiées utilisant le modèle respiratoire murin a été testée. Des groupes de souris ont été immunisés deux fois avec l'hydroxide d'aluminium seul (témoin), ou avec des protéines tronquées purifiées adsorbées sur l'hydroxide d'aluminium puis ces souris ont été mises en contact par voie intranasale, avec des doses sublétales de souches B. Pertussis 18323 virulentes. Ce modèle témoigne de la capacité des bactéries à adhérer, coloniser, survivre et se multiplier dans le système respiratoire des souris. Comme le montre la figure 4, les bactéries se multiplient rapidement dans les poumons des souris témoins pendant 6 jours après l'infection, puis commencent à être éliminées des poumons. Aucune multiplication des bactéries n'a été observée dans les poumons de souris immunisées avec les protéines AC-Hly ou r-AC-Hly de B. Dertussis et après 3 jours, le nombre de bactéries a commencé à décroître (figure 4). En accord avec les observations antérieures (Betsou F., Sebo et N. Guiso, 1993, CyaCmediated activation is important not only for toxic but also for protective activities of Bordetella pertussis adenylate cyclase-hemolysin, Infect. Immun. 61:3583-3589), l'efficacité protectrice de B. Dertussis AC-Hly était plus élevée que celle de r-AC-Hly. Une protection similaire à celle induite par r-AC-Hly était aussi obtenue avec la protéine ACla, suggérant que la partie délétée dans la protéine ACla entre les résidus 827 et 887 n'étaient pas indispensable à l'induction de l'immunité protectrice. La protéine AH manquant des résidus 385 à 828, présentait une activité protectrice plus faible que ACla. Aucune protection n'était induite par la protéine Ace 307 dépourvue de la totalité de la partie hémolysine de l'AC-Hly.De façon plus intéressante, la protéine AC217 dépourvue des 217 derniers résidus et la protéine AHR2 contenant les derniers 217 résidus de l'AC-Hly, ne permettaient pas d'induire la protection. L'activité protectrice est donc corrélée avec le schéma de reconnaissance des constructions individuelles par des sérums de patients infectés ou de souris infectées. DISCUSSION Les anticorps dirigés contre l'AC-Hly sont habituellement présents dans des sérums d'enfants infectés (Arciniaga J.L., E.L. Hewlett, F.D. Jonhson, A. Deforest, S.G.F. Wassilak, I.M. Onorato, C.R. Manclark, et D.L. Burns, 1991, J. Infect. Dis. 163:135-142 ; et Guiso N., E. Grimprel, I. Anjak et P. Bégué, 1993, Eur. J. Clin. Microbiol. and Infect. Dis. In press) et il a été dans le passé démontré que I'immunisation avec l'AC-Hly protège des souris contre la colonisation bactérielle par Bordetella (Khelef, N., H. Sakamoto et N. Guiso, 1992, Microb. Pathog. 12:227-235). L'obtention d'un ensemble de formes tronquées de l'AC-Hly recombinante a permis de réaliser une étude de l'importance de différents domaines de la protéine dans l'induction de l'immunité protectrice par vaccination avec I'AC-Hly. Les résultats présentés ci-dessus montrent que les anticorps anti-AC-Hly, synthétisés après infection par B. Dertussis sont de façon prédominante dirigés contre le domaine modifié et le domaine répété de I'AC-Hly (environ 800 résidus). En effet, seules les formes tronquées de l'AC-Hly possédant ces régions intactes étaient reconnues par des sérums de souris et de patients infectés dans un test Western-Blot et ces protéines étaient les seules à présenter la capacité d'induire la protection chez la souris.Ceci indique qu'au moins dans le cas de la souris, un ensemble relativement limité d'épitopes identiques ou se chevauchant pourrait être intéressant pour, à la fois l'induction de la synthèse d'anticorps anti-AC-Hly par les sujets infectés et pour l'induction de la synthèse d'anticorps protecteurs obtenus après vaccination avec I'AC-Hly. Les expériences rapportées précédemment ont montré que la suppression des 217 derniers résidus de l'AC-Hly qui sont en position distale par rapport aux sites de modification de la protéine par le produit d'expression du gène CyaC, au niveau du résidu lysine 983, abolissait la reconnaissance de cette protéine (AC217) par les sérums de souris et de patients infectés et abolissait également son activité protectrice.Cependant, ceci n'était pas dû à un défaut de modification de la protéine AC217 puisque cette protéine était acylée au niveau des chaînes d'acides gras lorsqu'elle était produite en présence de la protéine CyaC. De plus, les 217 résidus en soi n'étaient pas reconnus par les sérums et ne montraient pas d'activité protectrice lorsqu'ils étaient présentés dans la protéine AHR2 qui elle était dépourvue du site de modification (lysine 983) et d'une grande partie de la région répétée. On en a conclu que à la fois les 217 derniers résidus et la région de modification était importants pour l'activité protectrice de AC-Hly. Ainsi, une interaction entre la région modifiée et les 217 derniers résidus de l'AC Hly serait requise pour la formation ou l'activité des épitopes protecteurs de l'AC-Hly. De manière surprenante, ni la protéine AC217 manquante des 217 derniers résidus de l'AC-Hly, ni la protéine AHR2 dépourvue de la région modifiée et d'une grande partie des répétitions mais contenant les 217 derniers résidus, n'ont été reconnus par les sérums polyclonaux de patients infectés etlou de souris (sérum frais).Les antisérums pourraient avoir une spécificité étroite contre un unique épitope, ou contre un petit groupe d'épitopes localisés au point de rupture des régions répétées présentes dans les protéines AC217 et AHR2 (proline1489). Cependant, cette possibilité semble peu probable avec des antisérums polyclonaux mélangés. En outre, les sérums de souris et de patients humains infectés reconnaissaient la plupart des polypeptides de longueur complète des différentes protéines mais ne reconnaissaient pas les fragments protéolitiques C-terminaux clivés présents dans ces préparations fragments qui étaient reconnus par un anticorps monoclonal anti-AC.Pris ensemble, ces résultats suggèrent que la formation d'épitopes protecteurs sur l'AC-Hly et la reconnaissance de l'AC-Hly par les sérums de sujets infectés nécessitent la présence d'une structure particulière formée seulement lorsque les régions modifiée et répétée de I'AC-Hly sont présentes. On peut concevoir que la formation de cette structure nécessiterait la modification par acylation des chaînes d'acides gras après la traduction de I'AC-Hly au niveau du résidu lysine 983 et pourrait être abolie par la suppression de la partie C-terminale de l'AC-Hly. A cet égard, il est important qu'à la fois les activités hémolytiques et cytotoxiques de l'AC-Hly soient perdues lorsque l'on supprime les derniers 75 résidus de l'AC-Hly qui contiennent le signal de sécrétion non modifié et ne soient pas directement impliquées dans l'activité de formation des pores (4 et 29). Ces observations supportent en outre l'hypothèse que la partie extrême de la région C-terminale de l'AC-HIy joue un rôle essentiel dans la structure globale de l'AC-Hly. On a déjà suggéré que des épitopes protecteurs majeurs de I'AC Hly seraient localisés dans la partie AC (Guiso, N., M. Rocancourt, M. Szatanik et J.M. Alonso, 1989, Molec. Pathog. 7:373-380 et Guiso, N. M. Szatanik, et M. Rocancourt, 1991, Microb. Pathog. 11:423431). Les résultats présentés ici montrent que la contamination par des fragments AC-Hly s'étendant sur les régions modifiée et répétée de l'AC-HIy entrerait dans l'obtention d'une activité protectrice associée avec les fragments du domaine AC présent dans les préparations décrites dans l'état de la technique. On peut néanmoins douter de la capacité de ces contaminants en quantités mineures à produire une activité protectrice. Une autre interprétation serait que, dans certaines conditions, la région entre les acides aminés 385 et 450 ou 500 pourrait également jouer un rôle dans l'activité protectrice de l'AC-Hly. La structure de cette région pourrait être modifiée dans l'AC-Hly en l'absence des 217 derniers résidus d'acides aminés ou en l'absence de l'acylation.La structure de la partie N-terminale de 40-50 kDa et la présentation au système immunitaire pourrait induire la protection lorsque cette structure serait clivée par rapport au reste de la molécule d'AC-Hly dans les surnageants de culture de B. Pertussis. Un argument de cette hypothèse serait qu'un anticorps monoclonal dirigé contre la partie de la molécule localisée entre les acides aminés 385 et 400 est un anticorps protecteur. On a également examiné si une corrélation existe entre l'activité protectrice d'une protéine tronquée obtenue à partir de la r-AC-Hly in vivo et son activité à induire la synthèse d'anticorps qui pourrait neutraliser l'activité toxique in vitro. Une telle corrélation n'a pas été établie. Alors que toutes les protéines ayant une activité protectrice induisaient la synthèse d'anticorps neutralisants, la protéine AHR2 qui n'était pas du tout protectrice induisait une réponse anticorps fortement neutralisante. Ceci suggère que la présence d'anticorps neutralisants vis-à-vis de l'activité toxique de l'AC-Hly n'est pas une mesure fiable de l'induction de la protection contre l'infection par B. pertussis. II est par ailleurs important de noter que la protéine ACla, dépourvue d'une partie du domaine hydrophobe, présentait une activité protectrice. Cette protéine recombinante est un bon candidat pour l'inclusion dans des vaccins acellulaires contre pertussis puisqu'elle n'exerce pas d'activité cytotoxique résiduelle. Préparation d'extrait urée vra Les extraits urée vrg sont préparés à partir des 3 mêmes espèces bactériennes phase IV c'est à dire à partir de bactéries n'exprimant plus aucun gène vag mais exprimant les gènes vrg. Les produits de ces gènes ne sont pas encore bien caractérisés, à l'exception des flagelles de B. bronchisePtica. Les extraits urée vrg se préparent comme les extraits urée vag. Descrintion des milieux de culture Milieu Bordet Genaou deshydraté Composition: 1 litre 5 litres Milieu Bordet Gengou 30 g 150 g Glycérol 10 ml 50 ml Eau pyrolysée 1 litre 5 litres Ajuster le pHâ 7,4 - Faire chauffer - Autoclaver 15 minutes à 1200 - Conserver à 4"C Au moment de l'emploi: Le Bordet Gengou est enrichi avec 15 à 20% de sang de mouton ou de cheval. Faire fondre les tubes et les maintenir fondus à 54"C. Rajouter 2,5 ml de sang de mouton dans chaque tube, stérilement. Verser le contenu du tube dans une boîte de pétri stérile. RemarQue: Pour la recherche de Bordetella pertussis à partir de prélèvement nasopharyngé, utiliser des boîtes fraîches (maximum 7 jours à 4"C) Milieu Gélose CSM Pour préparer 2 litres d'une solution concentrée 10 fois: Sodium Hydrogénoglutamate.. (Réf. Prolabo n 27872.298) 1079 L-Proline... (Réf. Merck n 7434) 2,49 NaCI... ..(Réf. Prolabo n 27810.295)... 259 H2PO4.. (Réf. Prolabo n 26926.298)... 59 KCl... (Réf. Prolabo n 26759.291)... 29 MgCl2... ..(Réf. Prolabo n 25108.295).... 1g Tris-base... ... (Réf. Merck n 8382.2500)... 15,29 Casamino Acide . (Réf. Difco n 0288-01-2)... 59 Solution de CaCl2 à 1% dans l'eau pyrolysée......20 ml (Réf. Prolabo n 22317.297 Eau pyrolysée QSP.. .1 litre Dissoudre les différents constituants dans une partie du volume d'eau final. Ajuster le pH à 7,4 à l'aide d'acide chlorydrique. Compléter au volume final et conserver à -20 C. - Au moment de l'emploi, mélanger: - 100 ml de la solution concentrée 10 fois - 900 ml d'eau pyrolysée - 1 g de (2,6-0-Dimethyl) cyclodextrine référence Aldrich n 51166-71-3 - 15 g de Bacto agar référence Difco n 0140-01 Répartir par fractions de 20 ml en tube de verre Stériliser et ajouter le complément stérile. -Solution de complément: -Mélanger: -1 ml de solution de complément concentrée 10 fois - 100 mg de glutathion référence Merck n 4090 - 9 ml d'eau pyrolysée Filtrer cette solution sur filtre millex 0,22 pm Ajouter 200 ,ul de cette solution à 1 tube de 20 ml de milieu Milieu de culture Stainer A. Milieu de Base Pour préparer 2 litres d'une solution concentrée 10 fois: Sodium Hydrogénoglutamate (Réf. Prolabo n027872.298). . .21 4,0g L-Proline (Réf. Merck n 7434)... .. 4,89 NaCI (Réf. Prolabo n 27810.295) 50,0g H2PO4 (Réf. Prolabo n 26926.298) 10,09 KCI (Réf. Prolabo n 26759.291) 4,0g MgCl2 (Réf.Prolabo n 25108.295) 2,0g Tris-base (Réf. Merck n 8382.2500) 30,5g Solution de CaCl2 à 1% dans l'eau pyrolysée... ...40 ml (Réf. Prolabo n 22317.297 Eau pyrolysée QSP... ..2 litres Dissoudre les différents constituants dans une partie du volume d'eau final. Ajuster le pH à 7,6 à l'aide d'acide chlorydrique. Compléter au volume final et répartir cette solution concentrée qui peut être conservée à -20 C pendant plusieurs semaines. Au moment de l'emploi, diluer le milieu, le stériliser à 1200C pendant 15 minutes puis ajouter le complément stérilisé par filtration. B. Solution de complément Pour préparer 200 ml d'une solution concentrée 10 fois: - L-Cystine (Réf. Prolabo n 23260.184) 8g -HCI concentré 20ml Dissoudre. Sur cette préparation, verser le mélange suivant préalablement dissout: FeSO4,7H20 (Réf. Prolabo n 24244.232) 2g Acide L(+) ascorbique (Réf. Prolabo n 20155.237) 4g Acide nicotinique (Réf. Merck n 6817)... ... 0,89 Eau pyrolysée... ..120ml Compléter à 200 ml avec de l'eau pyrolysée, répartir la solution par fractions de 1, 2, 3 ou 4 ml et congeler à -20 C. Au moment de l'emploi, diluer la solution 10 fois dans l'eau pyrolysée et ajouter: le glutathion (Réf. Merck n04090)....100mg110ml de complément dilué, stériliser cette solution par filtration (filtre Millex 0,22 pm à usage unique) et ajouter 1 ml de solution stérile à 100 ml de milieu de base stérile. 2.1.2. Préparation de l'extrait urée vrn - Centrifuger la suspension bactérienne 30 minutes à 5000 g à 4"C. - Resuspendre le culot bactérien dans de l'urée 5M préparée dans du tampon PBS (décrit plus loin) à raison d'un volume égal à 5 fois le poids humide du culot bactérien. - Laisser sous agitation durant 1 heure à 4"C puis centrifuger 40 minutes à 40000 g à 4 C, - Conserver le surnageant à -80 C jusqu'à utilisation. 2.1.3.inactivation de Itextrait urée vra - Après élimination de l'urée, par passage sur colonne G25, I'extrait urée vrg est dilué en PBS de façon à obtenir une concentration protéique de 300 pglml. - Ajouter goutte à goutte un volume de glutaraldéhyde à 2,5% de façon à obtenir une concentration finale de 0,05%. - Laisser 2 heures à température ambiante en mélangeant régulièrement. - Arrêter la réaction par addition de lysine (concentration finale 0,02M). - Après 2 heures à température ambiante, l'extrait urée est adsorbé sur hydroxyde d'alumine préparé en PBS (1 mg/ml), pendant une nuit à 4"C sous agitation douce. Le vaccin est alors prêt pour l'immunisation de l'animal à raison de 10 à 20 pglinjection (décrit plus loin). REVENDICATIONS 1. Séquence d'acides aminés dérivée de la séquence polypeptidique de l'adenylcyclase-hémolysine (AC-Hly), caractérisée en ce qu'elle est capable d'induire la formation d'anticorps protecteurs contre une infection par B. pertussis etlou B. paraDertussis etlou B. bronchiseptica et en ce qu'elle est choisie parmi les enchaînements suivants: a) une séquence comprenant l'enchaînement des acides aminés situés approximativement entre la position 910, de préférence 913, et le dernier acide aminé C-terminal de la séquence polypeptidique de l'AC-Hly de B. Pertussis ou d'une séquence correspondant à la précédente chez B. paraDertussis ou chez B. bronchisePtica ladite séquence comportant une modification par addition d'un acide gras entre les acides aminés 980 environ et 985 environ, de préférence au niveau de l'acide aminé 983; b) une séquence comprenant un enchaînement de 6 à 500 acides aminés comprenant les acides aminés 385 à 400 de la séquence polypeptidique de l'AC-Hly de B. pertussis ou d'une séquence correspondant à la précédente chez B. parapertussis ou chez B. bronchiseptica; c) une séquence comprenant les enchaînements d'acides aminés définis ci-dessus en a) et b), lesdits enchaînements étant soit contigus, soit réunis par l'intermédiaire de l'enchaînement d'acides aminés naturellement présents entre les enchaînements définis ci-dessus en a) et b) au sein de l'AC-Hly de B. pertussis, B. paranertussis ou B. bronchiseptica, soit réunis par l'intermédiaire d'une séquence antigénique dérivée d'une protéine différente de l'AC-Hly, la séquence d'acides aminés obtenue ayant une conformation tridimensionnelle identique ou analogue à celle de la séquence polypeptidique correspondante de I'AC-Hly de B. pertussis, B. paraPertussis ou B. bronchiseptica. 2. Séquence d'acides aminés selon la revendication 1 caractérisée en ce qu'elle est sous la forme d'un polypeptide ayant une conformation tridimensionnelle identique ou analogue à celle de la séquence polypeptidique correspondante de l'AC-Hly de B. pertussis ou de B. parapertussis ou de B. bronchiseptica, en ce qu'elle comprend l'enchaînement d'acides aminés situé entre les positions 900 environ, en particulier 910, et le dernier acide aminé C-terminal environ de la séquence polypeptidique de l'AC-Hly de B. pertussis ou d'une séquence correspondant à la précédente chez B. naraPertussis ou chez B. bronchiseptica, ladite séquence comportant en outre une modification par addition d'un acide gras entre les acides aminés 980 environ et 985 environ, en particulier au niveau de l'acide aminé 983. 3. Séquence d'acides aminés selon la revendication 1, caractérisée en ce qu'elle est formée par l'enchaînement des acides aminés compris entre l'acide aminé en position 385 environ et le dernier acide aminé Cterminal environ de la séquence polypeptidique de l'AC-Hly de B. Pertussis ou d'une séquence correspondant à la précédente chez B. Darapertussis ou chez B. bronchiseptica, ladite séquence comportant une modification par addition d'un acide gras entre les acides aminés 980 environ et 985 environ, de préférence au niveau de l'acide aminé 983. 4. Séquence d'acides aminés selon la revendication 1, caractérisée en ce qu'elle est formée par l'enchaînement des acides aminés compris entre l'acide aminé en position 385 environ et l'acide aminé en position 400 environ de la séquence polypeptidique de I'AC-Hly de B. pertussis ou d'une séquence correspondant à la précédente chez B. Darapertussis ou chez B. bronchiseptica. 5. Séquence d'acides aminés selon la revendication 1, caractérisée en ce qu'elle est formée par l'enchaînement des acides aminés compris entre l'acide aminé en position 385 environ et l'acide aminé en position 500 environ de la séquence polypeptidique de l'AC-Hly de B. pertussis ou d'une séquence correspondant à la précédente chez B. naranertussis ou chez B. bronchiseptica. 6. Séquence d'acides aminés selon la revendication 1, caractérisée en ce qu'il s'agit de la séquence polypeptidique de l'AC-Hly modifiée par délétion d'un fragment polypeptidique appelé ACla correspondant à l'enchaînement des acides aminés 827 à 887 de la séquence polypeptidique de l'AC-Hly de B. Pertussis ou d'une séquence correspondant à la précédente chez B. narasertussis ou chez B. bronchiseptica, la séquence obtenue comportant une modification par addition d'un acide gras entre les acides aminés 980 environ et 985 environ, de préférence au niveau de l'acide aminé 983. 7. Séquence d'acides aminés selon la revendication 1 caractérisée en ce qu'il s'agit de la séquence polypeptidique de l'AC-Hly modifiée par délétion d'un fragment polypeptidique appelé AH correspondant à l'enchaînement des acides aminés 385 à 827 de la séquence polypeptidique de l'AC-Hly de B. Pertussis ou d'une séquence correspondant à la précédente chez B. narapertussis ou chez B. bronchisentica, la séquence obtenue comportant une modification par addition d'un acide gras entre les acides aminés 980 environ et 985 environ, de préférence au niveau de l'acide aminé 983. 8. Séquence d'acides aminés selon l'une quelconque des revendications 1 à 7, caractérisée en ce que la modification par addition d'un acide gras est une palmitoylation. 9. Composition polypeptidique, caractérisée en ce qu'elle comprend une séquence selon l'une quelconque des revendications 1 à 8 de B. Dertussis et une séquence selon l'une quelconque des revendications 1 à 8 de B. parapertussis. 10. Composition polypeptidique selon la revendication 3, caractérisée en ce qu'elle comprend en outre une séquence selon l'une quelconque des revendications 1 à 8 de B. bronchisentica. 11. Composition polypeptidique, caractérisée en ce qu'elle comprend une séquence selon une quelconque des revendications 1 à 8 de B. parapertussis et une séquence selon une quelconque des revendications 1 à 8 de B. bronchiseDtica. 12. Séquence nucléotidique codant pour une séquence d'acides aminés selon l'une quelconque des revendications 1 à 7. 13. Composition immunogène caractérisée en ce qu'elle comprend une ou plusieurs séquences selon l'une quelconque des revendications 1 à 11. 14. Composition immunogène selon la revendication 13 caractérisée en ce qu'elle comprend en outre un extrait bactérien contenant les produits d'expression des gènes vrp d'une souche de Bordetella choisie parmi B. pertussis, B. naraPertussis ou B. bronchiseptica ou une partie de ces produits d'expression, suffisante pour induire une réponse immunitaire chez un hôte auquel l'extrait serait administré. 15. Composition immunogène selon la revendication 14 caractérisée en ce qu'elle comprend en outre une ou plusieurs adhésines ou toxines de B. pertussis, B. parasertussis ou B. bronchisentica choisie(s) parmi la FHA, les AGG ou la PRN et la PTX ou une partie de ces protéines, suffisante pour induire une réponse immunitaire chez un hôte auquel l'extrait serait administré. 16. Composition immunogène selon l'une quelconque des revendications 13 à 15, caractérisée en ce que la souche de B. pertussis à partir de laquelle sont obtenues les séquences d'acides aminés dérivées de la toxine AC-Hly et le cas échéant les protéines exprimées par les gènes vra, est la souche HAV déposée à la CNCM sous le n" 1-1 485. 17. Composition immunogène selon l'une quelconque des revendications 13 à 15, caractérisée en ce que la souche de B. parapertussis à partir de laquelle sont obtenues les séquences d'acides aminé dérivées de la toxine AC-Hly et les protéines exprimées par les gènes voir, est la souche n" 1 déposée à la CNCM sous le n" 1-1498. 18. Composition immunogène selon l'une quelconque des revendications 13 à 15, caractérisée en ce que la souche de B. bronchiseptica à partir de laquelle sont obtenues les séquences d'acides aminés dérivées de la toxine Ac-Hly et les protéines exprimées par les gènes vrg, est la souche 9735 déposée à la CNCM sous le n" 1-858. 19. Composition vaccinante caractérisée en ce qu'elle comprend à titre de principe actif, une composition immunogène selon l'une quelconque des revendications 13 à 18, en association avec un véhicule pharmaceutiquement acceptable et le cas échéant un adjuvant. 20. Sérum polyclonal tel qu'obtenu par les étapes de: - immunisation d'un animal avec une ou plusieurs séquences d'acides aminés selon l'une quelconque des revendications 1 à 7 associées ou non à un adjuvant, - récupération des anticorps formés, capables de reconnaître les séquences d'acides aminés utilisées pour l'immunisation. 21. Sérum polyclonal selon la revendication 20 caractérisé en ce que l'immunisation de l'animal est réalisée avec une ou plusieurs séquences d'acides aminés selon l'une quelconque des revendications 1 à 7 et une composition immunogène comprenant des antigènes différents de l'AC-Hly. 22. Procédé de préparation d'anticorps monoclonaux reconnaissant l'AC-Hly de B. Dertussis, et l'AC-HIy de B. Darapertussis et l'AC-Hly de B. bronchiseptica comprenant les étapes de: - immunisation d'un animal, par exemple une souris Balb/c avec un peptide comprenant la séquence des acides aminés 385 à 400 de I'AC-Hly de B. pertussis, I'immunisation étant le cas échéant réalisée au moyen d'administrations répétées du peptide; - fusion des cellules spléniques de l'animal immunisé avec des cellules de myélome pour former un hybridome; - culture de l'hybridome dans des conditions permettant la production d'anticorps; - récupération des anticorps dirigés contre la séquence des acides aminés 385 à 400 de l'AC-Hly de B. Dertussis. 23. Anticorps monoclonaux tels qu'obtenus par mise en oeuvre du procédé selon la revendication 22. 24. Anticorps monoclonaux caractérisés en ce qu'ils reconnaissent la séquence des acides aminés 385 à 400 de l'AC-Hly de B. pertussis. 25. Anticorps monoclonaux dirigés contre une séquence d'acides aminés selon l'une quelconque des revendications 1 à 7. 26. Procédé de préparation d'anticorps monoclonaux reconnaissant l'AC-Hly de B. Dertussis etlou de B. parapertussis etlou de B. bronchiseotica, comprenant les étapes de: - immunisation d'un animal, par exemple une souris Balb/c avec une séquence d'acides aminés selon l'une quelconque des revendications 1 à 9, - fusion des cellules spléniques de l'animal immunisé avec des cellules de myélome pour former un hybridome; - culture de l'hybridome dans des conditions permettant la production d'anticorps; - récupération des anticorps dirigés contre la séquence des acides aminés utilisée pour l'immunisation. 27. Composition pharmaceutique caractérisée en ce qu'elle comprend à titre de principe actif des anticorps monoclonaux selon l'une quelconque des revendications 22 à 26. 28. Anticorps monoclonaux selon l'une quelconque des revendications 22 à 26, pour l'utilisation comme médicament en immunothérapie chez un hôte infecté par B. pertussis etlou B. Darapertussis etlou B. bronchiseptica. 29. Sérum polyclonal selon la revendication 20 ou 21 pour l'utilisation comme médicament en immunothérapie chez un hôte infecté par B. Pertussis eUou B. paraPertussis etlou B. bronchiseptica. 30. Procédé de détection in vitro d'une infection par une Bordetella notamment par B. Pertussis, B. parapertussis ou B. bronchiseptica, caractérisé en ce que l'on met en contact un échantillon de fluide biologique d'un patient ou d'un animal susceptible d'être infecté par Bordetella, avec des anticorps monoclonaux selon l'une quelconque des revendications 23 à 25 ou avec un sérum polyclonal selon les revendications 20 ou 21 et en ce que l'on détecte une réaction immunologique entre lesdits anticorps monoclonaux ou polyclonaux et les bactéries du genre Bordetella lorsqu'elles sont présentes dans l'échantillon. 31. Procédé de détection in vitro d'une infection par une Bordetella notamment par B. pertussis, B. riarapertussis ou B. bronchiseptica, caractérisé en ce que l'on met en contact un échantillon de fluide biologique d'un patient ou d'un animal susceptible d'être infecté par Bordetella, avec une séquence d'acides aminés selon l'une quelconque des revendications 1 à 7 et en ce que l'on détecte une réaction immunologique entre lesdites séquences d'acides aminés et des anticorps présents dans l'échantillon testé. 32. Composition pharmaceutique caractérisée en ce qu'elle comprend à titre de principe actif, des séquences nucléotidiques selon la revendication 12.