Brevet FR2738827A1 — publié le 19970321

La présente invention relève du domaine des techniques de détection et/ou d'amplification, à l'aide de sondes ou d'amorces oligonucléotidiques, et leur application à la recherche de la présence ou à l'identification des bactéries du genre Enterobacteriaceae. Dans le cadre de certains tests de diagnostic, notamment lors de recherche d'infection septicémique ou dans le domaine alimentaire, il est souvent nécessaire d'obtenir une réponse rapide concernant la présence de bactéries, en particulier de bactéries gram négatif, et plus précisément d'entérobactéries, dans un échantillon. Toutefois, les techniques couramment développées (coloration de Gram, identification biochimique,...) nécessitent une étape préalable de culture, souvent dans des conditions très spécifiques (hémoculture, par exemple), en raison de la faible proportion en particules bactériennes présentes dans l'échantillon de départ. Une solution possible réside dans l'utilisation des technologies relatives aux acides nucléiques et au matériel génétique, afin de déterminer si un gène, une partie de gène ou une séquence nucléotidique est présent chez un organisme vivant, un extrait cellulaire de cet organisme ou un échantillon. Etant donné que tout gène ou partie de gène est caractérisé par une séquence spécifique de bases nucléotidiques, il est par conséquent possible de rechercher directement la présence de tout ou partie de ladite séquence spécifique au sein d'un échantillon contenant un mélange de polynucléotides. Différents types de méthodes de détection des acides nucléiques sont décrits dans la littérature. Ces méthodes reposent sur les propriétés d'appariement purine- pyrimidine des brins complémentaires d'acides nucléiques dans les duplex ADN-ADN, ADN-ARN et ARN-ARN. Ce processus d'appariement s'effectue par l'établissement de liaisons hydrogène entre les bases adénine- thymine (A-T) et guanine-cytosine (G-C) de l'ADN double brin; des paires de bases adénine-uracile (A-U) peuvent également se former par liaison hydrogène dans les duplex ADN-ARN ou ARN-ARN. L'appariement de brins d'acide nucléique pour la détermination de la présence ou de l'absence d'une molécule d'acide nucléique donnée est communément appelée "hybridation d'acides nucléiques" ou simplement "hybridation"- Selon la présente invention, on a identifié de nouveaux marqueurs génétiques permettant la détection spécifique de bactéries appartenant à la famille des Entérobactéries dans tout échantillon, ne nécessitant aucune étape préalable de culture bactérienne. L'invention repose sur l'utilisation de séquences nucléiques spécifiquement définies dans le gène rpoB codant pour une des sous-unités de l'ARN polymérase bactérienne. Selon Lazcano et al., 1988, les ARN polymérases sont divisées en deux groupes selon leur origine, l'un constitué par les ARN polymérases virales ARN ou ADN dépendantes, et l'autre constitué par les ARN polymérases ADN-dépendantes d'origine eucaryote ou procaryote (archaebactéries et eubactéries). Les ARN polymérases ADN- dépendantes eubactériennes sont caractérisées par une constitution multimérique simple et conservée notée "core enzyme" et figurée par q0(' ou "holoenzyme" et figurée par c(3'' [Burgess et al., J. Biol. Chem. (1969) 244: 6168- 6176; Chamberlin, Ann. Rev. Biochem. (1974) 43: 721-775; Yura and Ishihama, Ann. Rev. Genet. (1979) 13: 59-97; Sentenac, CRC - Crit. Rev. Biochem. (1985) 18(1): 31-90]. De nombreux travaux ont mis en évidence le rôle fonctionnel, au sein du complexe enzymatique multimérique, de la sous-unité P de l'ARN polymérase eubactérienne. Les ARN polymérases archaebactérienne et eucaryote présentent, pour leur part, une structure plus complexe pouvant atteindre une dizaine, voire une trentaine, de sous-unités [P hler et al. - Proc. Natl. Acad. Sci. USA (1989) 86: 4569-4573; Sentenac, CRC - Crit. Rev. Biochem. (1985) 18(1): 31-90]. Les gènes qui codent pour les différentes sous- unités de l'ARN polymérase ADN-dépendante chez les eubactéries, respectivement rpoA, rpoB, rpoC et rpoD pour cd3'a', sont regroupés en différents segments comprenant des gènes codant pour des protéines constitutives des sous-unités ribosomiques ou pour des enzymes impliquées dans la réplication et la réparation du génome [Yura and Yshihama, Ann. Rev. Genet. (1979) 13: 59-97]. Certains auteurs ont montré que les séquences nucléiques des gènes rpoB et rpoC pouvaient être utilisées afin de construire des arbres phylogénétiques [Lazcano et al., J. Mol. Evol. (1988) 27: 365-376; Zillig et al., Can. J. Microbiol. (1989) 35: 73-80; Rowland et ai., Biochem. Soc. Trans. (1992) 21: 40S] permettant de séparer les différents embranchements et sousembranchements parmi les règnes du vivant. En outre, il a été montré, chez les eubactéries, que la sous-unité P constitue la molécule cible des rifamycines (dont la rifampicine), des streptovaricines et de la streptolydigine [Kumar and Chatterji, Biochemistry (1990) 29: 317-322; Kumar et al., Biochemistry (1992) 31: 7519-7526] et que le gène rpoB constitue le support génétique de la résistance des germes à ces antibiotiques [Ovchinnikov et al., Mol. Gen. Genet. (1983) 190: 344- 348; Lisitsyn et al., Mol. Gen. Genet. (1984) 196: 173- 174]. De nombreuses mutations du gène rpoB affectant la régulation de l'expression et de la fonction de l'ARN polymérase ont ainsi été décrites [Landick et ai, Genes Dev. (1990) 4: 1623-1636] dont certaines sont liées à des mutations conférant le phénotype résistant à la rifampicine [Jin and Gross, J. Biol. Chem. (1991) 266: 14478- 14485; Jin and Turnbough, J. Mol. Biol. (1994) 236: 72-80]. La détermination de la résistance à la rifampicine de souches Mycobacterium tuberculosis par l'utilisation du gène rpoB a fait l'objet de plusieurs travaux (Hunt et al., 1994, Diagn. Microbiol. Infect. Dis., 18, 219-227; Whelen et al., 1995, J. Cli. Microbiol. 33, 556-561; et demande de brevet n WO 9322454). On a maintenant découvert sur l'ADN codant pour la sous unité p de l'ARN polymérase bactérienne des zones variables selon les familles bactériennes, mais qui apparaissent conservées parmi la famille des Enterobacteriaceae, ce qui permet de discriminer cette famille bactérienne parmi d'autres familles bactériennes. Par ailleurs, il existe dans lesdites zones conservées, des variations mineures de séquence entre certaines espèces entérobactériennes. Ces résultats ont permis de concevoir des sondes nucléiques spécifiques soit de la famille entérobactérienne, soit de certaines espèces particulières. Avant d'exposer plus en détail l'invention, différents termes utilisés dans la description et les revendications sont définis ci-après: - par "acide nucléique extrait de bactéries" on entend soit l'acide nucléique total, soit l'ADN génomique, soit les ARN messagers, soit encore l'ADN obtenu à partir de la transcription inverse des ARN messagers; - un "fragment nucléotidique" ou un "oligonucléotide" sont deux termes synonymes désignant un enchaînement de motifs nucléotidiques caractérisé par la séquence informationnelle des acides nucléiques naturels (ou éventuellement modifiés) et susceptibles de s'hybrider, comme les acides nucléiques naturels, avec un fragment nucléotidique complémentaire ou sensiblement complémentaire, dans des conditions prédéterminées. L'enchaînement peut contenir des motifs nucléotidiques de structure différente de celle des acides nucléiques naturels. Un fragment nucléotidique (ou oligonucléotide) peut contenir par exemple jusqu'à 100 motifs nucléotidiques. Il contient généralement au moins 10, et en particulier au moins 12 motifs nucléotidiques et peut être obtenu à partir d'une molécule d'acide nucléique naturelle et/ou par recombinaison génétique et/ou par synthèse chimique, - un motif nucléotidique est dérivé d'un monomère qui peut être un nucléotide naturel d'acide nucléique dont les éléments constitutifs sont un sucre, un groupement phosphate et une base azotée; dans l'ADN le sucre est le désoxy-2-ribose, dans l'ARN le sucre est le ribose; selon qu'il s'agit d'ADN ou d'ARN, la base azotée est choisie parmi l'adénine, la guanine, l'uracile, la cytosine, la thymine; ou bien le monomère est un nucléotide modifié dans l'un au moins des trois éléments constitutifs; à titre d'exemple, la modification peut intervenir soit au niveau des bases, avec des bases modifiées telles que l'inosine, la méthyl-5- désoxycytidine, la désoxyuridine, la diméthylamino-5-désoxyuridine, la diamino-2,6-purine, la bromo-5-désoxyuridine ou toute autre base modifiée capable d'hybridation, soit au niveau du sucre, pas exemple le remplacement d'au moins un désoxyribose par un polyamide [P.E. Nielsen et al., Science, 254, 1497-1500 (1991)], soit encore au niveau du groupement phosphate, par exemple son remplacement par des esters notamment choisis parmi les diphosphates, alkyl- et aryl- phosphonates et phosphorothioates, - par "séquence informationnelle", on entend toute suite ordonnée de motifs de type nucléotidique, dont la nature chimique et l'ordre dans un sens de référence constituent une information analogue à celle donnée par la séquence des acides nucléiques naturels, - par "hybridation", on entend le processus au cours duquel, dans des conditions appropriées, deux fragments nucléotidiques ayant des séquences suffisamment complémentaires sont susceptibles de s'associer par des liaisons hydrogène stables et spécifiques, pour former un double brin. Les conditions d'hybridation sont déterminées par la "stringence", c'est-à-dire la rigueur des conditions opératoires. L'hybridation est d'autant plus spécifique qu'elle est effectuée à plus forte stringence. La stringence est fonction notamment de la composition en bases d'un duplex sonde/cible, ainsi que par le degré de mésappariement entre deux acides nucléiques. La stringence peut également être fonction des paramètres de la réaction d'hybridation, tels que la concentration et le type d'espèces ioniques présentes dans la solution d'hybridation, la nature et la concentration d'agents dénaturants et/ou la température d'hybridation. La stringence des conditions dans lesquelles une réaction d'hybridation doit être réalisée dépend notamment des sondes utilisées. Toutes ces données sont bien connues et les conditions appropriées peuvent éventuellement être déterminées dans chaque cas par des expériences de routine. En général, selon la longueur des sondes utilisées, la température pour la réaction d'hybridation est comprise entre environ 20 et 65 C, en particulier entre 35 et 650C dans une solution saline à une concentration d'environ 0,8 à 1M. - une "sonde" est un fragment nucléotidique comprenant par exemple de 10 à 100 motifs nucléotidiques, notamment de 12 à 35 motifs nucléotidiques, possédant une spécificité d'hybridation dans des conditions déterminées pour former un complexe d'hybridation avec un acide nucléique cible ayant, dans le cas présent, une séquence nucléotidique comprise soit dans un ARN messager, soit dans un ADN obtenu par transcription inverse dudit ARN messager, soit encore dans un ADN dont ledit ARN messager est le produit de transcription; une sonde peut être utilisée à des fins de diagnostic (notamment sondes de capture ou de détection) ou à des fins de thérapie, une "sonde de capture" est immobilisée ou immobilisable sur un support solide par tout moyen approprié, par exemple par covalence, par adsorption, ou par synthèse directe sur un support solide (voir notamment la demande de brevet WO 92 10092) - une "sonde de détection" peut être marquée au moyen d'un marqueur choisi par exemple parmi les isotopes radioactifs, des enzymes, en particulier des enzymes susceptibles d'agir sur un substrat chromogène, fluorigène ou luminescent (notamment une peroxydase ou une phosphatase alcaline), des composés chimiques chromophores, des composés chromogènes, fluorigènes ou luminescents, des analogues de bases nucléotidiques, et des ligands tels que la biotine, une "amorce" est une sonde comprenant par exemple de 10 à 100 motifs nucléotidiques et possédant une spécificité d'hybridation dans des conditions déterminées pour l'initiation d'une polymérisation enzymatique, par exemple dans une technique d'amplification telle que la PCR (Polymerase Chain Reaction), dans un procédé de séquençage, dans une méthode de transcription inverse, etc., Un premier objet de la présente invention est un oligonucléotide monocaténaire choisi parmi les oligonucléotides ayant une séquence d'au moins 12 motifs nucléotidiques consécutifs incluse dans l'une- des séquences SEQ ID N 1 à SEQ ID N 52, et parmi les oligonucléotides complémentaires de ces oligonucléotides. Une première application d'un oligonucléotide de l'invention est une sonde pour la détection, dans un échantillon biologique, de bactéries appartenant à la famille des entérobactéries, qui comprend une séquence nucléotidique d'au moins 12 motifs nucléotidiques consécutifs incluse dans l'une des séquences SEQ ID N 01 à SEQ ID N 4, et leurs séquences complémentaires. Dans la suite de la description, une telle sonde de l'invention sera appelée sonde de genre. Une seconde application d'un autre nucléotide de l'invention est une sonde pour la détection, dans un échantillon biologique, d'au moins une espèce d'entérobactéries, sonde qui comprend une séquence nucléotidique d'au moins 12 motifs nucléotidiques consécutifs incluse dans: SEQ ID N 5 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 53, SEQ ID N 6 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 54, SEQ ID N 7 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N055, SEQ ID N 8 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 56, SEQ ID N 8 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 57, SEQ ID N"9 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N058, SEQ ID N 10 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 59, SEQ ID N011 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 60, SEQ ID N 12 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N061, SEQ ID N 13 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 62, SEQ ID N 14 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 63, SEQ ID N 15 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 64, SEQ ID N 16 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 65, SEQ ID N 17 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 64, SEQ ID N 18 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N066, SEQ ID N019 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 67, SEQ ID N 20 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 68, SEQ ID N 21 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 69, SEQ ID N 22 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 70, SEQ ID N 23 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 71, SEQ ID N 24 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 72, SEQ ID N 25 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 73, SEQ ID N 26 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 74, SEQ ID N 27 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 75, SEQ ID N 28 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N076, ou qui comprend une séquence complémentaire. De telles sondes de l'invention seront appelées sondes d'espèce, dans la présente description. Plus particulièrement, les sondes d'espèces comprennent ou consistent en une séquence nucléotidique choisie parmi les séquences SEQ ID N 29 à SEQ ID N 52. Les sondes selon l'invention peuvent être utilisées, à des fins de diagnostic, dans la recherche de la présence ou de l'absence d'un acide nucléique cible dans un échantillon, selon toutes les techniques d'hybridation connues et notamment les techniques de dépôt ponctuel sur filtre, dites "DOT-BLOT" (MANIATIS et al, Molecular Cloning, Cold Spring Harbor, 1982), les techniques de transfert d'ADN dites "SOUTHERN BLOT" [SOUTHERN. E.M., J. Mol. Biol., 98, 503 (1975)], les techniques de transfert d'ARN dites "NORTHERN BLOT", ou les techniques dites "sandwich" [DUNN A.R., HASSEL J.A., Cell, 12, 23 (1977)]; on utilise en particulier la technique sandwich, avec une sonde de capture et/ou une sonde de détection, lesdites sondes étant capables de s'hybrider avec deux régions différentes de l'acide nucléique cible, et l'une au moins desdites sondes (généralement la sonde de détection) étant capable de s'hybrider avec une région de la cible qui est spécifique de l'espèce ou du groupe d'espèces recherché, étant entendu que la sonde de capture et la sonde de détection doivent avoir des séquences nucléotidiques au moins partiellement différentes. Pour mettre en oeuvre les techniques d'hybridation précitées, et en particulier les techniques "sandwich", une sonde de l'invention est immobilisée sur un support solide, elle sera la sonde de capture, et une autre sonde de l'invention est marquée avec un agent traceur, elle sera la sonde de détection. Un autre objet de l'invention est un procédé de détermination de la présence ou de l'absence d'au moins une entérobactérie, dans un échantillon contenant ou susceptible de contenir des acides nucléiques d'au moins une telle bactérie, comprenant les étapes consistant à mettre en contact ledit échantillon avec au moins une sonde de genre ou d'espèce de l'invention, puis à déterminer de façon connue en soi la formation ou l'absence de formation d'un complexe d'hybridation entre ladite sonde et l'acide nucléique de l'échantillon. Selon une mise en oeuvre particulière de ce procédé pour la détermination de la présence ou l'absence d'une espèce ou d'un groupe d'espèces d'entérobactérie, on utilise d'une part une sonde de genre de l'invention et d'autre part une sonde d'espèce de l'invention, étant entendu que lesdites sondes de genre et d'espèce sont capables de s'hybrider avec des régions non chevauchantes d'un acide nucléique correspondant au gène rDoB des entérobactéries. De manière avantageuse, la sonde de genre est immobilisée sur un support solide, et la sonde d'espèce est marquée avec un agent traceur. La présente invention a aussi pour objet l'application du procédé de l'invention pour déterminer la présence d'une espèce d'entérobactérie déterminée. Ainsi l'invention concerne: - un procédé pour la détermination de la présence ou de l'absence de Salmonella sofia, selon lequel on utilise une sonde choisie parmi celles comprenant une séquence nucléotidique d'au moins 12 motifs nucléotidiques consécutifs incluse dans l'une des séquences choisies parmi: SEQ ID N 5 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 53, SEQ ID N 27 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 75, et leurs séquences complémentaires; Préférentiellement, une sonde de l'espèce Salmonella sofia a une séquence nucléotidique qui consiste ou qui comprend une séquence choisie parmi SEQ ID N 29, SEQ ID N 51 et, leurs séquences complémentaires; - un procédé pour la détermination de la présence ou de l'absence de Salmonella thyphimurium, selon lequel on utilise une sonde choisie parmi celles comprenant une séquence nucléotidique d'au moins 12 motifs nucléotidiques consécutifs incluse dans l'une des séquences choisies parmi: SEQ ID N 6 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 54, SEQ ID N 11 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 60, SEQ ID N 24 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 72, SEQ ID N 25 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 73, et leurs séquences complémentaires; Préférentiellement, une sonde de l'espèce Salmonella thyphimurium a une séquence nucléotidique qui consiste ou qui comprend une séquence choisie parmi SEQ ID N 30, SEQ ID N 35, SEQ ID N 48, SEQ ID N 49, SEQ ID N 52, et leurs séquences complémentaires; - un procédé pour la détermination de la présence ou de l'absence de Shigella dysenteriae selon lequel on utilise une sonde choisie parmi celles comprenant une séquence nucléotidique d'au moins 12 motifs nucléotidiques consécutifs incluse SEQ ID N 7 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 55 et sa séquence complémentaire; Préférentiellement, une sonde de l'espèce Shigella dysenteriae a une séquence nucléotidique qui consiste ou qui comprend une séquence choisie parmi SEQ ID N 31, et sa séquence complémentaire; - un procédé pour la détermination de la présence ou de l'absence de Escherichia fergussoni, selon lequel on utilise une sonde choisie parmi celles comprenant une séquence nucléotidique d'au moins 12 motifs nucléotidiques consécutifs incluse dans l'une des séquences choisies parmi: - SEQ ID N 8 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 56, SEQ ID N 8 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 57, SEQ ID N 19 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 67, et leurs séquences complémentaires; Préférentiellement, une sonde de l'espèce Escherichia fergussoni a une séquence nucléotidique qui consiste ou qui comprend une séquence choisie parmi SEQ ID N 32, SEQ ID N 43, et leurs séquences35 complémentaires; - un procédé pour la détermination de la présence ou de l'absence de Enterobacter cloacae, selon lequel on utilise une sonde choisie parmi celles comprenant une séquence nucléotidique d'au moins 12 motifs nucléotidiques consécutifs incluse dans l'une des séquences choisies parmi: SEQ ID N 9 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 58, SEQ ID N 13 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 62, SEQ ID N 16 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 65, SEQ ID N 17 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 64, SEQ ID N 18 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 66, SEQ ID N 21 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 69, SEQ ID N 22 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 70, et leurs séquences complémentaires; Préférentiellement, une sonde de l'espèce Enterobacter cloacae a une séquence nucléotidique qui consiste ou qui comprend une séquence choisie parmi SEQ ID N 33, SEQ ID N 37, SEQ ID N 40, SEQ ID N 41, SEQ ID N 42, SEQ ID N 45, SEQ ID N 46, et leurs séquences complémentaires; - un procédé pour la détermination de la présence ou de l'absence de Klebsiella pneumoniae, selon lequel on utilise une sonde choisie parmi celles comprenant une séquence nucléotidique d'au moins 12 motifs nucléotidiques consécutifs incluse dans l'une des séquences choisies parmi: SEQ ID N 10 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 59, SEQ ID N 14 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 63, SEQ ID N 15 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 64, SEQ ID N 20 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 68, SEQ ID N 23 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 71, et leurs séquences complémentaires; Préférentiellement, une sonde de l'espèce Klebsiella pneumoniae a une séquence nucléotidique qui consiste ou qui comprend une séquence choisie parmi SEQ ID N 34, SEQ ID N 38, SEQ ID N 39, SEQ ID N 44, SEQ ID N 47, et leurs séquences complémentaires. - un procédé pour la détermination de la présence ou de l'absence de Escherichia coli, selon lequel on utilise une sonde choisie parmi celles comprenant une séquence nucléotidique d'au moins 12 motifs nucléotidiques consécutifs incluse dans l'une des séquences choisies parmi: SEQ ID N 12 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 61, SEQ ID N 26 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 74, et leurs séquences complémentaires. Préférentiellement, une sonde de l'espèce Escherichia coli a une séquence nucléotidique qui consiste ou qui comprend une séquence choisie parmi SEQ ID N036, SEQ ID N 50, et leurs séquences complémentaires. Selon une mise en oeuvre particulière de ces procédés, on utilise les sondes sélectionnées en combinaison avec une sonde de genre de l'invention. Encore un objet de l'invention est une amorce nucléotidique utilisable pour la synthèse d'un acide nucléique en présence d'une polymérase de façon connue en soi, et notamment dans des méthodes d'amplification utilisant une telle synthèse en présence d'une polymérase (PCR, RT-PCR, etc...), ladite amorce comprenant un oligonucléotide tel que défini précédemment. Notamment, une amorce de l'invention peut être utilisée pour la transcription inverse spécifique d'une séquence d'ARN messager d'au moins une espèce ou d'au moins un groupe d'espèces d'entérobactéries pour obtenir une séquence d'ADN complémentaire correspondante. Une telle transcription inverse peut constituer le premier stade d'une RT-PCR, le stade suivant étant l'amplification par PCR de l'ADN complémentaire obtenu. On peut également utiliser les amorces de l'invention pour l'amplification spécifique par réaction de polymérisation en chaîne de la séquence d'ADN du gène rpoB d'au moins une espèce ou d'au moins un groupe d'espèces d'entérobactérie. Selon un cas particulier ladite amorce comprenant un oligonucléotide de l'invention comprend en outre la séquence sens ou anti-sens d'un promoteur reconnu par une ARN polymérase (T7, T3, SP6 par exemple): de telles amorces sont utilisables dans des procédés d'amplification d'acide nucléique faisant intervenir une étape de transcription, tels que, par exemple, les techniques NASBA ou 3SR. Enfin, un dernier objet de l'invention est une sonde de thérapie pour traiter les infections provoquées par au moins une espèce ou un groupe d'espèces d'entérobactérie, ladite sonde comprenant un oligonucléotide tel que défini précédemment. Cette sonde de thérapie, capable de s'hybrider sur l'ARN messager et/ou sur l'ADN génomique desdites bactéries peut bloquer les phénomènes de traduction et/ou de transcription et/ou de réplication. Le principe des méthodes de thérapie génique est connu et repose notamment sur l'utilisation d'une sonde correspondant à un brin anti-sens: la formation d'un hybride entre la sonde et le brin sens est capable de perturber au moins l'une des étapes du décryptage de l'information génétique. Les sondes de thérapie sont donc utilisables comme médicaments antibactériens, permettant de lutter contre les infections causées par des d'entérobactéries. Dans des conditions qui sont précisées dans l'exemple 1 ci- après, on a déterminé la séquence nucléotidique de l'ADN correspondant au gène rpoB de deux espèces d'entérobactérie, ainsi que d'une espèce appartenant à une famille de bactéries également Gram négatives. Cette étude a porté sur les espèces Escherichia coli, Shigella dysenteriae et Pseudomonas putida. On a recherché des régions fortement conservées pour les seules espèces entérobactériennes, permettant de les distinguer des autres genres bactériens. On a ainsi sélectionné, en faisant référence à la numérotation de la séquence nucléotidique du gène rpoB de Escherichia coli ATCC 25290, une région intéressante de 512 bases, à savoir des positions 1498 à 2009 du gène rpoB. On a déterminé les séquences de ces mêmes régions pour d'autres espèces d'entérobactéries, ainsi que pour plusieurs espèces n'appartenant pas à la famille des entérobactéries. Les résultats de ces différents séquençages sont résumés dans les figures 1 à 9 annexées dans lesquelles le signe * représente un site vacant dont la représentation est nécessaire pour l'alignement des séquences en tenant compte de certaines espèces possédant à ce site un motif nucléotidique supplémentaire. Les résultats de ces recherches, c'est-à-dire les alignements de séquences figurant dans les figures 1 à 9, ont permis de concevoir des sondes dans les régions conservées chez toutes les espèces d'entérobactéries, qui permettent de détecter la présence ou l'absence d'au moins une bactérie quelconque de la famille des entérobactéries. En outre, l'utilisation de sondes contenant des zones mutées pour une espèce particulière (par rapport à l'espèce de référence, ici E. coli), rend possible la détection directe d'une telle espèce. Dans les techniques d'hybridation sandwich, utilisant deux sondes en combinaison (sonde de capture et sonde de détection), on utilisera par exemple en combinaison une sonde spécifique de la famille des entérobactéries et une sonde spécifique de l'espèce considérée. On peut aussi utiliser en combinaison deux sondes spécifiques de ladite espèce, lorsqu'elles existent, ces deux sondes étant complémentaires de régions non chevauchantes du gène rpoB. Comme on l'a indiqué précédemment, les sondes nucléotidiques de l'invention peuvent être utilisées dans les méthodes classiques d'hybridation. L'acide nucléique à détecter (cible) peut être de l'ADN ou de l'ARN (l'un ou l'autre éventuellement obtenu après amplification). Dans le cas d'une cible nucléique double brin, il convient de procéder à sa dénaturation avant la mise en oeuvre du procédé de détection. L'acide nucléique cible peut être obtenu par extraction selon les méthodes connues des acides nucléiques d'un échantillon à examiner. La dénaturation d'un acide nucléique double brin peut être effectuée par les méthodes connues de dénaturation chimique, physique ou enzymatique, et en particulier par chauffage à une température appropriée, supérieure à 800C. Dans certains cas, la mise en évidence de la présence d'une espèce d'Entérobacterie donnée nécessite l'utilisation de sondes permettant la détection d'une mutation ponctuelle. Pour cela, il convient d'opérer avec des sondes d'une longueur (nombre de motifs nucléotidiquei prédéterminée, dans des conditions elles-mêmes prédéterminées. D'autres précisions sont données ci-après, en faisant référence plus particulièrement à la méthode d'hybridation sandwich qui constitue l'une des méthodes d'hybridation les plus pratiques actuellement. Cette méthode comprend la mise en contact d'une première sonde fixée sur un support solide avec une solution contenant l'acide nucléique à analyser, et la mise en contact dudit support avec la sonde de détection, l'incubation du mélange obtenu, le rinçage du support; pour éliminer les constituants non fixes sur le support par hybridation spécifique, et la détection qualitative ou quantitative, à l'aide d'une réaction de révélation du marqueur fixé sur le support, de la sonde de détection fixée. La révélation de la présence du marqueur peut être effectuée par exemple par colorimétrie, fluorescence ou luminescence. La mise en contact de la sonde de capture avec l'échantillon et avec la sonde de détection peut être effectuée de façon séquentielle, éventuellement avec rinçage intermédiaire du support. On peut également opérer par mise en contact simultanée ou quasi-simultanée de la sonde de capture fixée sur le support avec une solution contenant l'échantillon et la sonde de détection qui peuvent être ajoutées sous forme de mélange ou séparément. Les stades d'incubation et de lavage consécutif, qui constituent les étapes-clés du procédé d'hybridation sandwich, sont chacune effectuée à une température constante qui peut être par exemple comprise dans la gamme mentionnée plus haut (voir les "Définitions"). On sait que les hybrides d'acides nucléiques ont une température de dissociation qui dépend du nombre de bases hybridées (la température augmentant avec la taille de l'hybride) et qui dépend également de la nature des bases hybridées et, pour chaque base hybridée, de la nature des bases adjacentes. La dissociation des hybrides se produit sur un intervalle de température de quelques degrés et peut être facilement déterminée, par exemple en spectroscopie U.V.. Il est possible de déterminer expérimentalement la température de demi-dissociation de l'hybride formé par une sonde donnée avec la cible de séquence complémentaire, par de simples expériences de routine. La température d'hybridation utilisée dans la technique d'hybridation sandwich doit évidemment être choisie en-dessous de la température de demi-dissociation. Plus exactement, on opère à une température inférieure à la température de demi- dissociation de l'hybride le moins stable parmi les deux hybrides que forme la cible avec d'une part la sonde de capture et d'autre part la sonde de détection, afin que les deux hybrides soient stables à la température à laquelle on opère. Une mutation ponctuelle, c'est-à-dire une mutation entraînant un mésappariement portant sur une seule paire de bases dans l'hybride, entraîne une modification, généralement un abaissement, de la température de demi- dissociation. En utilisant des sondes suffisamment courtes, un tel mésappariement unique peut entraîner un abaissement relativement important de la température de demi-dissociation, de l'ordre de quelques degrés. Ainsi, en choisissant, à l'aide d'expériences de routine préalables, une sonde de longueur appropriée, en opérant dans une solution tampon donnée, il est possible de déterminer une température à laquelle il sera possible de n'observer l'hybridation que dans le cas o la sonde est strictement complémentaire de la cible. En outre, grâce au choix de sondes courtes de longueur prédéterminée, il est possible de mettre en oeuvre la technique d'hybridation sandwich à une température unique prédéterminée, par exemple 37 C. Pour une discussion plus détaillée de la technique d'hybridation sandwich avec utilisation de sondes courtes, on peut se reporter notamment à la demande de brevet FR-2 663 040. Les exemples suivants illustrent l'invention. EXEMPLE 1 Des amorces conservées ont été sélectionnées pour amplifier la partie séquencée: CM7: 5' AACCAGTTCCGCGTTGGCCTGG 1348 -1405 CM31 5' CCTGAACAACACGCTCGGA 2473-2455 Les coordonnées étant exprimées selon la séquence codante du gène rpoB d'E. coli V00340 de Genbank. L'ADN cible est extrait de chaque bactérie selon la technique suivante. 1,5 ml de culture bactérienne est centrifugé et le culot repris dans 75 41 de tampon Tris (Tris 25 mM, EDTA 10 mM, saccharose 50 mM pH 8) et 25 M1 de solution de lysozyme (1 mg/ml en tampon Tris). Aprés incubation 30 min à 37 C, 50 g1 de phénol sont ajoutés et le tube est agité fortement pendant 30 secondes. On rajoute 50 p1 de chloroforme et on agite à nouveau 2 secondes. Apres centrifugation pendant 5 min, on récupère la phase aqueuse. L'ADN est amplifié selon la technique PCR de Saiki et al. (Saiki et al. 1988. Science 239, 487-494) à l'aide d'un appareil PCR 480 Perkin- Elmer. Le milieu de réaction (100 l1) est constitué de Tris.HCl, 10mmol/1; MgC12 1,5 mmol/l; KC1 50 mmol/l; gélatine 1 mg/ml; dATP, dCTP, dGTP, dTTP 0,5 mmol/l chacun; pH 8,3; oligonucléotide CM7, pmol; oligonucléotide CM31, 25 pmol et 10 p1 de la préparation d'ADN bactérien. Apres dénaturation 5 mn suivie d'une centrifugation, on ajoute l'enzyme à 1,5 U/réaction. La PCR est effectuée sur 30 cycles avec les paramètres 96 C/60 C/74 C, pendant 1 mn, 1 mn, et 0,7 mn respectivement. L'ADN amplifié est analysé par electrophorèse en gel d'agarose 0,8% en tampon TBE (89 mM Tris base, 89 mM acide borique, 2 mM EDTA). Les bandes sont visualisées par le bromure d'éthidium. La séquence des fragments ainsi amplifiés a été établie selon les techniques classiques. EXEMPLE 2: Utilisation d'une sonde spécifique dirigée contre le gène rpoB pour l'identification d'Escherichia coli La sonde commençant au nucléotide N 4 et finissant au nucleotide N 27 de la séquence SEQ ID N 12, a priori spécifique pour les souches d'E. coli a été déduite d'après les alignements des séquences nucléotidiques des gènes rpoB de la figure 4. Une collection de souches bactériennes a été testée par hybridation sur le fragment amplifié à partir de rpoB et a permis de constater a posteriori la spécificité de cette sonde. L'hybridation du produit PCR d'une bactérie-cible a été conduite selon le procédé de détection non- radioactif et semi-automatisé décrit dans le brevet français n 90 07249. Une sonde de capture S8L correspondant à une sonde de spécificité eubactérienne (décrite dans la demande de brevet FR n 93 02127) et un conjugué spécifique de détection oligonucléotide (correspondant à la sonde spécifique définie plus haut) - enzyme sont utilisés. La manipulation a été conduite selon le protocole suivant. Dans une plaque de microtitration (Nunc 439454) est déposée une solution de l'oligonucléotide de capture à 1 ng/ml dans du PBS 3X (0,45 M NaCl 0,15 M phosphate de sodium pH 7.0) dont l'extrémité 5' a réagi avec le réactif Aminolink 2 (Applied Biosystems, Foster city, Californie). La plaque est incubée 2 h à 37 C puis lavée 3 fois avec 300 pl de PBST (PBS lx, Tween 20: 0,5 /00 (Merck 822184)). Le réactif Aminolink 2 permet d'ajouter à l'extrémité 5' de la sonde un bras comportant un groupement 6-aminohexyle. La sonde ainsi couplée à un ligand possédant un groupement polaire (amine primaire), et fixée de façon passive sur le support, procure un signal amélioré; voir la demande de brevet FR 91 09057. La cible constituée par 4 Ml du produit amplifié est mélangée avec 76 gl de tampon PBS saumon (PBS3X + ADN de sperme de saumon 10 gg/ml (Sigma D9156) et 10 pl de soude 2N. L'ensemble est neutralisé 5 min après par l'addition de 10 il d'acide acétique 2N. L'ensemble est ajouté dans le puits en plus de 50 pl d'une solution du conjugué oligonucléotidepéroxydase à la concentration de 0,1 ng/ml en oligonucléotide dans un tampon PBS cheval (PBS3X + 10% sérum de cheval (BioMérieux 55842). Le conjugué oligonucléotide-péroxydase constitue la sonde de détection. La plaque est incubée 1 h à 370 C et lavée par 3 X 300 pl de PBST. Dans chaque puits, on rajoute 100 Ml de substrat OPD (ortho-phenylenediamine Cambridge Medical Biotechnology ref/456) dans un tampon adapté (0,055 M acide citrique, 0,1 M Na2HP04, pH 4,93) à la concentration de 4 mg/ml auquel on ajoute extemporanément H202 à volumes au 1/1000. Après 20 mn de réaction l'activité enzymatique est bloquée par 100 p/l d'H2S04 iN et la lecture est effectuée sur Axia Microreader (BioMérieux) à 492 nm. Les bactéries-cibles étaient notamment les suivantes: - 22 isolats ou souches E. coli (dont ATCC 25290, 25922, 27165, 10536); - Divers autres Escherichia (18 isolats): E. fergusonii, E. hermanii, E. vulneris: - 8 Shigella: S. boydii, S. dysenteriae (dont ATCC 29027), S. flexneri, S. sonnei; - 5 Salmonella: S. arizonae (ATCC 13314), S. choleraesuis (ATCC 13312), S. gallinarum, S. typhimurium (ATCC 14028), S. spp (ATCC 9712); - 7 entérobactéries diverses: Citrobacter amalonaticus (ATCC 25405), Enterobacter cloacae (ATCC 13047), Klebsiella oxytoca, K. pneumoniae, Kluivera ascorbata, Proteus mirabilis, Serratia marcescens (ATCC 8195), - Pseudomonas aeruginosa ATCC 35422, Pseudomonas putida, - Enterococcus faecalis. Les résultats obtenus indiquent que la combinaison de sondes utilisée est, a posteriori, spécifique d'E. coli. Elle ne présente pas de réactions croisées avec le produit PCR des autres espèces bactériennes. L'adaptation de la combinaison spécifique sur l'automate VIDAS (marque déposée - commercialisé par la société bioMérieux-VITEK) a été effectuée. La paroi du puits de microplaque est ici remplacée par le SPR (marque de commerce) ("Solid Phase Receptacle") qui est un support conique réalisé à partir d'un matériau vendu sous la dénomination K résine (copolymère butadiène-styrène) et commercialisé par la société bioMérieux-VITEK (USA). Les divers réactifs sont disposés dans une barrette à plusieurs cuvettes et les différentes étapes se déroulent dans le SPR qui est capable d'aspirer et de refouler les réactifs et qui fait donc office de pipette. La réaction d'hybridation sandwich décrite dans le protocole ci- dessous se produit sur la paroi interne du cône. Sur la surface interne du SPR, est fixé passivement l'oligonucléotide de capture comportant à son extrémité 5' le ligand Aminolink 2 (Applied Biosystemns- réf.400808) à une concentration de 1 ng/gl dans un volume de 315 g1 d'une solution de PBS 4x (phosphate de sodium mM pH 7,0, NaCl 600 mM). Après une nuit à température ambiante ou deux heures à 37 C, les cônes sont lavés 2 fois par une solution PBS Tween, puis séchés sous vide. La barrette contient dans des cuvettes les réactifs nécessaires à la détection, c'est à dire: 200 41 d'une solution à 0,1 ng/Ml du conjugué de détection oligonucléotide-phosphatase alcaline, 2 fois 600 g1 de solution de lavage PBS Tween et une cuvette de substrat. Dans le premier puits de la barrette, sont déposés p1 de produit PCR dans le même tampon que pour le protocole microplaque ci-dessus. Après incubation 30 minutes du cône par le mélange cible PCR plus sonde de détection, le cône est lavé 2 fois par une solution de PBS Tween. 250 41 de substrat MUP (mêthyl-4-umbelliféryl phosphate) en solution dans un tampon diéthanolamine sont aspirés dans le cône, puis relachés dans une cuvette de lecture. L'appareil mesure le signal fluorescent exprimé en URF (unités relatives de fluorescence) de la cuvette. Les résultats obtenus avec ce système sont les mêmes que ceux obtenus en microplaque. LISTE DES SEQUENCES SEQ ID N 1: GCAGTGAAAG AGTTCTT SEQ ID N 2: CAGGCTTCGA AGTTCGAGAA CGTACACCCG A SEQ ID N 3: TACCTGTCTG CTATYGAAGA AGGCAACTAC GTTATCGC SEQ ID N 4: TGCCGTAGCA AAGGCGAATC CAGCTTGTTC AGCCGYGACC AGGTTGACTA CATGGACGTW TCCACCCAGC AGGTGGTMTC CGTCGGTGCG TCCCTGATCC CG dans lesquelles Y = T ou C, W = A ou T, M = A ou C SEQ ID N 5: GCGGCAGTGA AAGAGTTCTT SEQ ID N 6: GCCGCAGTGA AAGAGTTCTT SEQ ID N 7: GAACAACCCG CTGTCCGAGA TTACGCACAA ACGT SEQ ID N 8: TCTGAGATTA CACACAAGCG TCGTATCTCC GCA SEQ ID N 9: CAAACGTCGT ATCTCTGCAC TCGGCCCAGG SEQ ID N 10: TCTGACCCGT GAGCGCGCAG GCTTCGAAGT TC SEQ ID N 11: TCTGACCCGC GAACTGGCAG GCTTCGA SEQ ID N 12: GGTCTGATCA ACTCTCTGTC CGTGTACGCA SEQ ID N 13: GTGTACGCAC AGACAAACGA ATACGGCTT SEQ ID N 14: GTCCGTGTAC GCGCAGACCA ACGAATA SEQ ID N 15: CGCGCAGACC AACGAATA SEQ ID N 16: CAAACGAATA CGGTTTCCTT GAGAC SEQ ID N 17: CCTTGAGACC CCGTA SEQ ID N 18: CGTAAAGTGA CTGACGGTGT TGT SEQ ID N019: CGTAAAGTGA TTGACGGTGT TGT SEQ ID N 20: CGTAAAGTGA CCAACGGTGT SEQ ID N 21: CGGTGTTGTT ACCGACGAA ATT SEQ ID N022: TACCTGTCTG CTATTGAAGA AGGCAACTAC SEQ ID N 23: TGGATGAAAA CGGCCACTT SEQ ID N 24: GTAGAAGATT TGGT SEQ ID N 25: TGGTGACCTG CCGTAGCAAA GG SEQ ID N 26: CAGGCGAACT CCAACTTGGA TGA SEQ ID N027: CAGCTTGTTC AGCCGTGACC AGGTTGACTA SEQ ID N 28: - ACATGGACGT TTCCACCCAG CAGGTGG SEQ ID N 29: GCGGCAGTGA AAGAG SEQ ID N 30: GCCGCAGTGA AAGAG SEQ ID N 31:30 AACCCGCTGT CCGAGATTAC GCA SEQ ID N 32: TACACACAAG CGTCGT *SEQ ID N 33: CGTATCTCTG CACTCGG SEQ ID N 34: CGTGAGCGCG CAGGCTTC ZSoN GI ÈS SE D011DDDVD IDDDDVDILD : ISoN aI ÈsS VDVD9LDLD VVfDDIDVVDD : OoN aI È3S VI9DDD DIDDVfD99L 0ú : 6oN GI È3S L599L LLV9VV9V1Lf :t8oN GI ÈaS LJVDDD99vD kVVVVfVDDL LboN GI È23S SZ DDDVVDVVD 1VIDOWIDD : 9boN aI bS VVVfDDVDD DVOLIDIIDI : SoN QI ÈvS 9LD99DVV3D DDLDYVVLD OZ : oN GI ÈaS DDDvil. V9JovvvYL9D : EúoN aI ÈS DDDVDID V9D9DkVVVDD : ZoN aI sS si LLDDD DvD9V9LvD IboN GI OS 9DDA DDDIfDD 9LL3vDLL WfXW.LVV9f9 OboN QI ÈS 9D3VV DDVDVDDDDD 0I : 6EoN GI ÈS DVJNVDDV VVDVDVDVDZD : 8LúoN GI ÈS : úEo N GI hv RS S 9JJ9ZXXDLZD IDJVVDILVD 9EoN. QI ÈS SEoN aI Ss LZ DVVfXLILV1LO : OLoN GI ÈSS SE ZDDVILL : 69oN aI ÈMS VDOVD : 89oN QI bMS LLvDL 0ú : L9oN QI ÈS IDOI9 : 99oN GI ÈMS DDIJ'DEDV : 9oN QI ÈSS SZ DDVDV *9oN QI È3S VDYDD : ú90N QI 3S 93DVVVDV9V 0oZ Z Z9oN QI È2S IfXDL3BDLOV 19oN QI ÈS DDDD99DVVD O9oN QI ÈS 5 oN QI 3S DVDDIDJID : 8SoN GI ÈS DIODD 0I : LGoN QI ÈS : 9goN GI ôss VDVDDDIDI 3VO VO bgSoN aI ÈaS DVO9O ú SoN QI È3S D8DDD : ESoN GI È3S Z88E 8 : 9LoN QI ÈS DDV9ODID 0I : AoN QI Èas OOVDJD : úLoN QI ÈiS VDDXLLL)VDV : tLoN QI ÈFs úL.N GI È5SS S 99111v59Rl * ZLoN QI ÈX1S DDkr8f : ILoN GI ÈSS 6Z ZZ99úZZ REVENDICATIONS 1. Oligonucléotide monocaténaire choisi parmi les oligonucléotides ayant une séquence d'au moins 12 motifs nucléotidiques consécutifs incluse dans l'une des séquences SEQ ID N 1 à SEQ ID N 52, et parmi les oligonucléotides complémentaires de ces oligonucléotides. 2. Sonde pour la détection, dans un échantillon biologique, de bactéries appartenant à la famille des entérobactéries, caractérisé en ce qu'elle comprend une séquence nucléotidique d'au moins 12 motifs nucléotidiques consécutifs incluse dans l'une des séquences SEQ ID N 01 à SEQ ID N 4, et leurs séquences complémentaires. 3. Sonde pour la détection, dans un échantillon biologique, d'au moins une espèce d'entérobactéries, caractérisé en ce qu'elle comprend une séquence nucléotidique d'au moins 12 motifs nucléotidiques consécutifs incluse dans: SEQ ID N 5 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N053, SEQ ID N 6 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N054, SEQ ID N 7 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N055, SEQ ID N 8 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 56, SEQ ID N 8 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 57, SEQ ID N 9 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 58, SEQ ID N 10 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N059, SEQ ID N 011 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 60, SEQ ID N 12 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 61, SEQ ID N 13 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 62, SEQ ID N 14 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 63, SEQ ID N 15 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 64, SEQ ID N 16 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 65, SEQ ID N 17 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 64, SEQ ID N 18 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 66, SEQ ID N 19 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 67, SEQ ID N 20 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 68, SEQ ID N 21 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 69, SEQ ID N 22 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 70, SEQ ID N 23 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 71, SEQ ID N 24 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 72, SEQ ID N 25 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 73, SEQ ID N 26 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 74, SEQ ID N 27 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 75, SEQ ID N 28 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 76, ou une séquence complémentaire. 4. Sonde selon la revendication 3, caractérisée en ce qu'elle comprend ou consiste en une séquence nucléotidique choisie parmi les séquences SEQ ID N 29 à SEQ ID N 52. 5. Sonde selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisé elle est immobilisée sur un support solide. 6. Sonde selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisé par le fait qu'elle est marquée avec un agent traceur. 7. Procédé de détermination de la présence ou de l'absence d'au moins une entérobactérie, dans un échantillon contenant ou susceptible de contenir des acides nucléiques d'au moins une telle bactérie, caractérisé en ce qu'on met en contact ledit échantillon avec au moins une sonde selon l'une des revendications 2 à 6, puis on détermine de façon connue en soi la formation ou l'absence de formation d'un complexe d'hybridation entre ladite sonde et l'acide nucléique de l'échantillon. 8. Procédé selon la revendication 7, pour la détermination de la présence ou l'absence d'une espèce ou d'un groupe d'espèces d'entérobactérie, caractérisé en ce qu'on utilise d'une part une première sonde telle que définie dans la revendication 2 et d'autre part une seconde sonde telle que définie dans la revendication 3 ou 4, étant entendu que lesdites première et seconde sondes sont capables de s'hybrider avec des régions non chevauchantes d'un acide nucléique correspondant au gène rpoB des entérobactéries. 9. Procédé selon la revendication 8, caractérisé en ce que ladite première sonde est telle que définie dans la revendication 5 et ladite deuxième sonde est telle que définie dans la revendication 6. 10. Procédé selon l'une quelconque des revendications 7 à 9, pour la détermination de la présence ou de l'absence de Salmonella sofia, caractérisé en ce qu'on utilise une sonde choisie parmi celles comprenant une séquence nucléotidique d'au moins 12 motifs nucléotidiques consécutifs incluse dans l'une des séquences choisies parmi: SEQ ID N 5 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 53, SEQ ID N 27 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 75, et leurs séquences complémentaires. 11. Procédé selon la revendication 10, caractérisé en ce que la sonde a une séquence nucléotidique qui consiste ou qui comprend une séquence choisie parmi SEQ ID N 29, SEQ ID N 51 et, leurs séquences complémentaires. 12. Procédé selon l'une quelconque- des revendications 7 à 9, pour la détermination de la présence ou de l'absence de Salmonella thyphimurium, caractérisé en ce qu'on utilise une sonde choisie parmi celles comprenant une séquence nucléotidique d'au moins 12 motifs nucléotidiques consécutifs incluse dans l'une des séquences choisies parmi: SEQ ID N 6 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 54, SEQ ID N 11 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 60, SEQ ID N 24 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 72, SEQ ID N 25 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 73, et leurs séquences complémentaires. 13. Procédé selon la revendication 12, caractérisé en ce que la sonde a une séquence nucléotidique qui consiste ou qui comprend une séquence choisie parmi SEQ ID N 30, SEQ ID N 35, SEQ ID N 48, SEQ ID N 49, SEQ ID N 52, et, leurs séquences complémentaires. 14. Procédé selon l'une quelconque des revendications 7 à 9, pour la détermination de la présence ou de l'absence de Shigella dysenteriae caractérisé en ce qu'on utilise une sonde choisie parmi celles comprenant une séquence nucléotidique d'au moins 12 motifs nucléotidiques consécutifs incluse SEQ ID N 7 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 55 et sa séquence complémentaire. 15. Procédé selon la revendication 14, caractérisé en ce que la sonde a une séquence nucléotidique qui consiste ou qui comprend une séquence choisie parmi SEQ ID N 31, et sa séquence complémentaire. 16. Procédé selon l'une quelconque des revendications 7 à 9, pour la détermination de la présence ou de l'absence de Escherichia fergussoni, caractérisé en ce qu'on utilise une sonde choisie parmi celles comprenant une séquence nucléotidique d'au moins 12 motifs nucléotidiques consécutifs incluse dans l'une des séquences choisies parmi: SEQ ID N 8 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 56, SEQ ID N 8 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 57, SEQ ID N 19 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 67, et leurs séquences complémentaires. 17. Procédé selon la revendication 16, caractérisé en ce que la sonde a une séquence nucléotidique qui consiste ou qui comprend une séquence choisie parmi SEQ ID N 32, SEQ ID N 43, et leurs séquences complémentaires. 18. Procédé selon l'une quelconque des revendications 7 à 9, pour la détermination de la présence ou de l'absence de Enterobacter cloacae, caractérisé en ce qu'on utilise une sonde choisie parmi celles comprenant une séquence nucléotidique d'au moins 12 motifs nucléotidiques consécutifs incluse dans l'une des séquences choisies parmi: SEQ ID N 9 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 58, SEQ ID N 13 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 62, SEQ ID N 16 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N065, - SEQ ID N 17 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 64, SEQ ID N 18 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N066, SEQ ID N 21 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N069, SEQ ID N 22 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 70, et leurs séquences complémentaires. 19. Procédé selon la revendication 18, caractérisé en ce que la sonde a une séquence nucléotidique qui consiste ou qui comprend une séquence choisie parmi SEQ ID N 33, SEQ ID N 37, SEQ ID N 40, SEQ ID N 41, SEQ ID N 42, SEQ ID N 45, SEQ ID N 46, et leurs séquences complémentaires. 20. Procédé selon l'une quelconque des revendications 7 à 9, pour la détermination de la présence ou de l'absence de Klebsiella pneumoniae, caractérisé en ce qu'on utilise une sonde choisie parmi celles comprenant une séquence nucléotidique d'au moins 12 motifs nucléotidiques consécutifs incluse dans l'une des séquences choisies parmi: SEQ ID N01 0 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 59, SEQ ID N 14 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 63, SEQ ID N 15 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 64, SEQ ID N 20 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 68, SEQ ID N 23 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 71, et leurs séquences complémentaires. 21. Procédé selon la revendication 20, caractérisé en ce que la sonde a une séquence nucléotidique qui consiste ou qui comprend une séquence choisie parmi SEQ ID N 34, SEQ ID N 38, SEQ ID N 39, SEQ ID N044, SEQ ID N 47, et leurs séquences complémentaires. 22. Procédé selon l'une quelconque des revendications 7 à 9, pour la détermination de la présence ou de l'absence de Escherichia coli, caractérisé en ce qu'on utilise une sonde choisie parmi celles comprenant une séquence nucléotidique d'au moins 12 motifs nucléotidiques consécutifs incluse dans l'une des séquences choisies parmi: SEQ ID N 12 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 61, SEQ ID N 26 et contenant au moins 5 motifs nucléotidiques consécutifs inclus dans SEQ ID N 74, et leurs séquences complémentaires. 23. Procédé selon la revendication 22, caractérisé en ce que la sonde a une séquence nucléotidique qui consiste ou qui comprend une séquence choisie parmi SEQ ID N 36, SEQ ID N 50, et leurs séquences complémentaires. 24. Procédé selon l'une quelconque des revendications 11 à 23, caractérisé par le fait que l'on utilise ladite sonde en combinaison avec une sonde telle que définie dans la revendication 2. 25. Amorce nucléotidique utilisable pour la synthèse d'un acide nucléique en présence d'une polymérase, caractérisée en ce qu'elle comprend un un oligonucléotide tel que défini à la revendication 1. 26. Sonde de thérapie, caractérisée en ce qu'elle comprend un oligonucléotide tel que défini à la revendication 1.