Brevet FR2729392A1 — publié le 19960719

OLIGONUCLEOTIDES POUR LA DETECTION DE SALMONELLA Le genre Salmonella contient deux espèces, Salmonella enterica, espèce divisée en six sous- espèces, sur la base de caractères biochimiques et d'homologies au niveau de l'ADN, et Salmonella bonqori. Le genre est subdivisé en plus de 2000 sérovariétés définies à l'aide d'antigènes somatiques et flagellaires. Les bactéries du genre Salmonella sont de façon générale pathogènes pour l'animal ou pour l'homme. On sait ainsi que les Salmonella sont parmi les agents responsables des empoisonnements alimentaires les plus courants dans les pays développés; c'est pourquoi des méthodes de détection rapides et fiables des sous-espèces de Salmonella sont importantes. Les salmonelles responsables des toxi-infections alimentaires appartiennent majoritairement à la sous- espèce I (encore appelée groupe I) de S. enterica. Les toxi-infections ne sont toutefois pas les seules pathologies provoquées par des infections par des Salmonella. Par exemple, Salmonella enterica sous-espèce enterica sérovariété typhi (ci-dessous dénommée Typhi) est l'agent causal de la fièvre typhoïde humaine. Compte tenu de la nature des infections provoquées par les salmonelles et de la nécessité notamment de rechercher leur présence dans les prélèvements biologiques réalisés sur des patients ou dans les aliments, il apparaît indispensable de disposer de moyens rapides et sensibles pour en détecter leur présence. Les méthodes standard de culture largement utilisées jusqu'à présent pour la détection des salmonelles nécessitent un temps important et ne sont pas adaptées par exemple pour suivre la contamination de produits alimentaires. Pour surmonter les désavantages de ces méthodes, plusieurs méthodes fondées sur des techniques de biologie moléculaire telles que des tests d'hybridation et des tests de réaction de polymérisation en chaîne, ont d'ores et déjà été proposées. Différentes sondes d'ADN ont été utilisées dans plusieurs protocoles d'hybridation et de PCR pour détecter les sous- espèces de Salmonella dans l'alimentation. Cependant, aucune de ces techniques n'est complètement satisfaisante, puisque les séquences utilisées ne sont pas totalement connues ou pas exclusivement présentes dans le genre Salmonella et ainsi, peuvent conduire à des réactions croisées entre la sonde et des séquences d'ADN d'autres enterobactéries ou peuvent conduire à un grand nombre de faux négatifs ou de faux positifs. Les inventeurs ont recherché des moyens permettant la détection spécifique et sensible de l'ensemble des salmonelles des espèces S. enterica et/ou S. bonqori. Dans cette optique, ils se sont intéressés à la souche Salmonella enterica sous-espèce enterica sérovariété typhi (S. Typhi) et au gène participant à l'invasion de cellules par S. Typhi. De plus, ils ont défini certaines conditions permettant la détection spécifique de groupes déterminés de Salmonelles, par exemple des bactéries du Groupe I. On a déjà montré dans l'état antérieur de la technique, que la souche Typhi est capable d'adhérer à des monocouches de cellules HeLa et d'entrer dans ces cellules (Yabuuchi et al, 1986). Cependant, jusqu'à présent, les déterminants génétiques impliqués dans ce processus d'adhésion et d'entrée dans les cellules, n'ont pas été clairement identifiés. Elsinghorst et al (1989) ont clone un fragment chromosomique de Typhi, qui confère à des bactéries de type Escherichia coli la capacité de pénétrer dans les cellules Henle 407. reo-_S'...osc-......... JFl dans l'invasion des cellules HeLa par la souche Typhi Ty2 a été identifiée et clonée (Popoff et Dion, 1990). Les inventeurs de la présente demande ont identifie sur un fragment d'ADN de 2,4 kb de S. typhi contenu dans la séquence HindIII de 7,9 kb décrite par Popoff et Dion (1990), des régions susceptibles de participer à l'activité d'invasion de Salmonella enterica sous-espèce enterica serovariété Typhi dans des cellules, et en particulier dans des cultures cellulaires de type HeLa, ces régions étant susceptibles en outre d'être utilisées dans des réactions pour la réalisation d'un diagnostic généralisé de tous les représentants des espèces S. enterica et/ou S. bongori ou éventuellement dans des conditions de détection particulières, pour le diagnostic spécifique du groupe I de S. enterica. Une séquence appelée IagA et une séquence appelée IagB ont été identifiées par les inventeurs et caractérisées comme participant à l'invasion cellulaire se manifestant lors d'une infection dûe à Salmonella enterica sous-espèce enterica sérovariété Typhi. La spécificité de ces séquences au sein de S. Typhi a conduit les inventeurs à proposer leur utilisation pour définir des moyens pour le diagnostic d'une infection par S. typhi, voire pour le diagnostic d'une infection par des Salmonella des espèce S. enterica et/ou S. bonqori ou dans certains cas pour la mise en évidence de S. enterica de groupes spécifiques. Ces moyens utilisables pour le diagnostic d'une infection par Salmonella enterica et/ou Salmonella bongori comprennent des oligonucléotides susceptibles d'être mis en oeuvre dans des réactions d'amplification de séquences de nucléotides, par exemple des réactions de polymérisation en chaîne. L'invention se rapporte aussi à des sondes pour la détection d'acides nucléiques de S. enterica ou d'une sous- espèce spécificrmP cip. ont eric et/ou de S. bor..ri, _ces acides nucléiques étant le cas écheant des fragments amplifiés. L'invention a également pour objet un kit et une méthode de détection de la présence de Salmonella enterica et/ou de Salmonella bonqori dans des échantillons biologiques et par exemple, dans des produits alimentaires ou dans tout échantillon faisant l'objet d'un diagnostic clinique. Ces méthodes et kits de détection sont selon un mode de réalisation particulier de l'invention, spécifiques des souches du groupe I de S. enterica. Selon un autre mode de réalisation de l'invention, ces méthodes permettent au contraire de rechercher la présence de bactéries S. enterica ou S. bongori du genre Salmonella. Le genre Salmonella comporte ainsi six sous-espèces ou groupes I, II, III, IV, V ou VI. Les sous-espèces I, II, III, IV et VI appartiennent à l'espèce S. enterica et la sous-espèce V appartient à l'espèce S. bonqori. L'invention concerne aussi les séquences de nucléotides, participant à l'invasion de cellules par Salmonella enterica sous-espèce enterica sérovariété Typhi, caractérisées en ce qu'il s'agit de l'une des séquences iagA ou iagB respectivement comprises entre les nucléotides 97 et 1755 de la séquence représentée à la figure 1 (IagA) et entre les nucléotides 1776 et 2255 de la séquence représentée à la figure 1 (IagB). L'invention vise aussi des séquences de nucléotides modifiées par rapport à iagA ou iagB mais présentant néanmoins les mêmes propriétés s'agissant de l'invasion des cellules, ou hybridant dans des conditions stringentes avec l'une des susdites séquences. La présente demande a également pour objet des protéines IagA et IagB répondant aux séquences présentées à la figure 1 ou des variantes de ces séquencPe nobt-eniiea par..t.tAI.. toinio d'acides aminés dès lors que la séquence ainsi obtenue est reconnue par des anticorps dirigés contre l'une des susdites séquences IagA ou IagB. De façon générale, l'invention a pour objet toute séquence d'acides aminés codée par les gènes iagA et iagB représentés à la figure 1. L'invention concerne par ailleurs tout fragment de l'une de ces séquences, suffisant pour conserver à S. typhi ses propriétés d'adhésion et d'infection des cellules, et en particulier des cellules HeLa en culture. Le procédé d'infection des cellules HeLa en culture est le procédé standard qui a notamment été décrit dans la demande de brevet internationale publiée sous le numéro WO 92/01056. Selon un autre aspect, l'invention concerne des moyens pour la détection de la présence de S. enterica et/ou S. bonqori et le cas échéant, pour la quantification de S. enterica et/ou S. bonqori dans des échantillons biologiques. Par échantillon biologique, on entend tout échantillon prélevé pour la réalisation d'analyses in vitro chez l'animal ou chez l'homme ou prélevé à partir de produits alimentaires quelle qu'en soit la nature ou à partir de tout milieu liquide, solide ou gazeux susceptible de contenir les agents pathogènes recherchés. L'invention a pour objet dans ce cadre, une séquence de nucléotides, comportant au moins 9 nucléotides, caractérisée en ce qu'elle hybride avec l'une des séquences IagA ou IagB présentées ci-dessus. Les conditions d'hybridation dont il est question précédemment sont définies en fonction de la spécificité recherchée de l'hybridation et des conditions appropriées sont données à titre indicatif dans les exemples de la présente demande. De façon préférée, l'invention concerne des oligonucléotides issus de la partie C-terminale de la séquence iagA représentée à la figure 1. Des séquences de type oligonucléotides peuvent être sélectionnées pour être utilisées comme amorces soit pour la détection après amplification, de l'ADN génomique ou de l'ADNc de Salmonella de l'espèce S. enterica et/ou de l'espèce S. bonqori appartenant aux autres groupes I à VI ou d'une partie de ces groupes soit dans d'autres conditions pour la détection spécifique de S. enterica du groupe I. I1 peut s'agir notamment de séquences de nucleotides obtenues par synthèse chimique selon les métodes connues de l'homme du métier. Des oligonucléotides préférés, utilisables pour l'amplification d'acide nucléique caractéristique de bactéries appartenant à l'un des groupes I, II, IIIa, IIIb, IV, V ou VI du genre Salmonella et notamment de l'ADN génomique ou de l'ADNc de S. enterica et/ou de S. bonqori sont par exemple les suivants (leur position au sein de la séquence IagA représentée à la figure 1 étant indiquée): position Iagl: 5'-TA TTA AGT ATG CAG GTT ATG 3' 1424-1443 Iag2: 5'-AGA GAA TTT CTG GAA AGT GAA- 3 ' 1585-1605 Iag3: 5'-ATA TCC ACG CAG GAA ATA ACA GGA CTT - 3' 1495-1521 Iag4: 5'-GAG CGT GCC TTA CCG ACG ATA-3' 1564-1584 Iag5: 5'-GCA GGG ATC ACT AAG CTG TG-3' 1318-1337 Iag6: 5'-CGT GGG CAA CCA GCA CTA ACG-3' 1637-1657 Slml: 5'-CG GGT TAA AGG TTA TCA CCT-3' 709-728 Slm2: 5'-AG CAT GGC GCA AAT GGG-3' 1014-1031 Slm3: 5'-GCA CCA GGA AAG CAT TAA GTT GAT AGA ACA C-3' 732-762 Slm4: 5'-CTT CGC TGG GAC ACA AAG CA-3' 823-842 SS28: 5'-TAA TGC TTT CCT GGT GC-3'. D'autres oligonucléotides susceptilbes d'être utilisés comme amorces pour l'amplification de l'ADN ou de l'ADNc du gène iagB de l'ensemble des souches Salmonella des espèces S. enterica et/ou S. bonqori ont été definies à partir de la séquence iagB représentée à la figure 1. L'invention a donc pour objet les oligonucléotides répondant aux enchainements suivants: Iag7: 5'-T ACG GCA TGG GCT GAT TGC T-3' Iag8: 5'-T TAC GCT ATC GCC CAG CAG CAG GA-3' Iag9: 5'-T GGT CAT AAC CGA GAT GGT TCA ACC GAT C-3' IaglO: 5'-A CAG TTG TTA CAG GAT CCC T-3' Ces oligonucleotides peuvent également être utilisés comme sondes, par exemple pour la détection des produits d'amplification de l'ADN et/ou de l'ADNc de S. enterica et/ou de S. bonqori. Un couple d'amorces préféré pour réaliser l'amplification de l'acide nucleique de S. enterica et/ou de S. bonqori, quel que soit le groupe d'appartenance de la bactérie, est par exemple formé des amorces Iag5 (sens) et Iag6 (antisens). Ce couple d'amorces dirige l'amplification d'un fragment d'acide nucléique de 340 bp. Un autre couple d'amorces préféré est formé des amorces Slml (sens) et Slm2 (antisens). Ces amorces sont susceptibles de s'hybrider avec l'ADN ou l'ADNc de bactéries S. enterica et/ou de S. bonqori de l'un des groupes I, II, III, IV, V ou VI. Selon un autre mode de réalisation préféré, l'invention concerne des oligonucléotides utilisables comme amorces pour la détection spécifique de Salmonella enterica Groupe I lorsque les conditions de détection après l'amplification de l'ADN ou de l'ADNc sont celles qui sont décrites dans l'exemple I. De telles amorces sont caractérisées par leur capacité à amplifier des séquences d'acide nucléique des souches de S. enterica ou de S. bonqori représentatives des groupes I, II, III, IV, V et VI, mais pour lesquelles les conditions de détection sont celles exposées dans l'exemple I, permettant la seule détection des bactéries du groupe I. Un couple d'oligonucléotides utilisables à ces fins, en tant qu'amorces spécifiques pour la détection de séquences d'ADN ou d'ADNc de S. enterica du groupe I est par exemple constitué par les séquences suivantes: SS2 5'-CCGGGCAGATGATACCC-3' et SS28 '-TAATGCTTTCCTGGTGC-3'. Les oligonucléotides définis par les inventeurs, permettent d'envisager le diagnostic de S. enterica et/ou de S. bonqori dans des conditions satisfaisantes de sensibilité de rapidité, de facilité et de spécificité. L'invention également a pour objet un kit pour la détection de S. enterica et/ou de S. bonqori par amplification de l'ADN génomique ou complémentaire de S. enterica et/ou de S. bonqori, caractérisé en ce qu'il comprend: des oligonucléotides tels que décrits précédemment, capables d'hybrider dans des conditions stringentes avec l'ADN génomique ou l'ADNc de S. enterica et/ou de S. bonqori, - une sonde pour la détection des fragments amplifiés répondant à l'une des définitions données dans les pages précédentes, - les réactifs nécessaires à la réalisation de la réaction d'amplification. L'invention a donc en particulier pour objet, l'utilisation des oligonucléotides précités, comme amorces pour l'amplification d'une séquence d'ADN ou d'ADNc de Salmonella enterica et/ou de Salmonella bonqori, comprise dans l'une des séquences iagA ou iagB telles que décrites dans les pages précédentes ou comolémentIirli AIiue tell Senc., ou crcore l'utilisation de ces oligonucleotides comme sonde pour la détection d'une séquence de nucléotides amplifiée. Par exemple, les oligonucléotides iag5 et iag6 peuvent être utilisés respectivement comme amorces sens et antisens pour la détection de S. enterica et/ou de S. bonqori du groupe I, II, III, IV, V ou VI. De même, le couple d'amorces Slml et Slm2 peut être utilisé pour la détection de bactéries de l'espèce S. enterica et/ou de S. bonqori de l'un de ces groupes dans un échantillon biologique. L'invention concerne également l'utilisation des oligonucleotides SS2 et SS28 pour la détection spécifique in vitro dans un échantillon biologique de S. enterica du groupe I. La détection est spécifique lorsque les amorces utilisées pour l'amplification des séquences de nucléotides recherchées permettent l'amplification de bactéries S. enterica et/ou de S. bongori appartenant à l'un des autres groupes II, III, IV, V ou VI, mais que les conditions mises en oeuvre ne permettent pas la détection des bactéries de ces mêmes groupes ou d'organismes différents susceptibles d'être présents dans l'échantillon biologique testé. L'invention concerne ainsi un ensemble d'oligonucléotides utilisables pour la détection de bactéries S. enterica et/ou de S. bonqori, après amplification de l'ADN génomique ou complémentaire de S. enterica et/ou de S. bonqori, caractérisé en ce qu'il comprend: - un couple d'oligonucléotides répondant aux définitions précédemment données, capables d'hybrider dans des conditions stringentes avec l'ADN génomique ou l'ADNc de S. enterica et/ou de S. bongori, - une sonde répondant aux caractéristiques données ci-dessus. Un premier ensemble d'oligonucléotides utilisables nour 1!;r. -t i. t....un ehantillo1 biologique, de souches de Salmonella enterica et/ou de S. bonqori appartenant à l'un des groupes I, II, III, IV, V ou VI, est caractérisé en ce qu'il contient les oligonucléotides suivants: - la sequence Iag5 (5'-GCA GGG ATC ACT AAG CTG TG-3' et la séquence Iag6 (5'-CGT GGG CAA CCA GCA CTA ACG-3') utilisables en tant qu'amorces pour l'amplification et - la sequence Iag3 (5'-ATA TCC ACG CAG GAA ATA ACA GGA CTT -3') utilisable comme sonde de révélation et la séquence Iag4 (5'-GAG CGT GCC TTA CCG ACG ATA-3') utilisable comme sonde de capture. Un autre ensemble d'oligonucléotides utilisables pour la détection spécifique in vitro dans un échantillon biologique, de S. enterica du groupe I, est caractérisé en ce qu'il comprend les oligonucléotides suivants: SS2 (5'-CCGGGCAGATGATACCC-3' et SS28 ('-TAATGCTTTCCTGGTGC-3'). La présente demande a par ailleurs pour objet une protéine iagA codée par la séquence de nucléotides iagA représentee à la figure 1 ainsi qu'une protéine iagB codée par la séquence de nucléotides iagB représentée à la figure 1. De façon préférée, les protéines iagA et iagB ont respectivement les séquences d'acides aminés représentées à la figure 1. Entre également dans le cadre de l'invention un procedé pour la détection in vitro dans un échantillon biologique, de séquences de nucléotides Salmonella enterica et/ou de S. bongori, préalablement amplifiées par exemple par PCR caractérisé en ce qu'il comprend les étapes de: dénaturation de la séquence de S. enterica et/ou de S. bonqori amplifiée, - mise en contact des séquences de nucléotides amplifiée é rn tur-esd S. c e rt/vU' dcS. il bongori, avec une sonde de capture et une sonde de révélation obtenues à partir des oligonucleotides ci- dessus définis dans des conditions permettant l'hybridation desdites sondes de capture et de révélation avec la susdite séquence de nucléotides amplifiée de S. enterica et/ou de S. bonqori, la sonde de capture étant fixée à la surface d'un puits d'une plaque de microtitration et la sonde de révélation étant marquée et libre dans un tampon d'hybridation approprié; - incubation du mélange réactionnel, pendant un temps suffisant pour permettre la réaction d'hybridation; - lavage pour éliminer les oligonucléotides n'ayant pas réagi; - révélation des sondes de révélation ayant hybride aux séquences de nucléotides amplifiées. Le procédé de détection précédemment décrit peut être avantageusement caractérisé en ce que la détection est réalisée conformément aux étapes suivantes: - dénaturation d'un volume 10 41 de la séquence amplifiée par addition volume à volume d'une solution mM NaOH, 40mM EDTA, préhybridation des microplaques dont la surface des puits est revêtue de la sonde de capture, dans un tampon d'hybridation approprié, - libération de la microplaque et remplissage de chacune des cupules avec 20041 de tampon d'hybridation renfermant le fragment amplifié dénaturé et la sonde de révélation marquée à la peroxydase à la concentration de lOng/l, incubation du mélange pendant une heure à 37 C sous agitation, - lavage du mélange ayant réagi avec une solution de lavage 10X (10OmM Tris, 3M NaCl, 1% Tween 20, pH 7,4), - détection de l'activité de la peroxydase liée à la sonde par colorimétrie en présence d'un substrat coloré. La révélation de l'activité de la peroxydase présente sur la sonde de révélation peut être obtenue par mise en oeuvre des étapes suivantes: - dépôt de 20041 d'une solution 40mM citrate trisodique, 0,03% H20 30%, 7,5mg/ml d'orthophenylenediamine (OPD) dans chacun des puits contenant le mélange de réaction, - incubation de la microplaque pendant 30min à l'obscurité et à 37 C, - bloquage de la réaction par addition de 504l/puits d'une solution 4N H2SO4, - détermination de la densité optique à une longueur d'onde de 492nm (référence à 620nm). De façon intéressante, la sonde de capture utilisée est l'oligonucléotide Iag4 et la sonde de révélation est l'oligonucléotide Iag3. Ainsi, les moyens définis dans le cadre de l'invention permettent la détection qualitative ou quantitative de la présence de bactéries de type S. enterica et/ou de S. bongori, qu'il s'agisse d'une détection non spécifique au sein de l'un des groupes I, II, III, IV, V ou VI de S. enterica et/ou de S. bongori. Dans des conditions spécifiques de mise en oeuvre de l'étape de détection, telles qu'exposées dans l'exemple I, les amorces SS2, SS28 et la sonde SS40 permettent au contraire la détection spécifique de bactéries du groupe I de S. enterica. D'autres caractéristiques et avantages de l'invention apparaissent dans les exemples qui suivent et dans les figures: Figure i: Séquence de nucléotide d'un fragment d'ADN de 2,4 kb de la région d'invasion de Salmonella ser. Typhi. Les sites potentiels de liaison au ribosome sont soulignés. Figure 2: Pourcentage de l'activité obtenue avec différentes souches de Salmonella appartenant à différentes sérovariétés par hybridation sandwich. Sérovariétés des différents isolats de Salmonella testés: a: S. enterica sous-espèce enterica (1), réf.: C53 b: S. enterica sous espèce salamae (II), réf.: 975-71 c: S. enterica sous espèce salamae (II), réf. : 3975-83 d: S. enterica sous espèce arizonae (IIIa), réf.: 1600 K e: S. enterica sous espèce arizonae (IIIa), réf.: So -20 f: S. enterica sous espèce diarizonae (II), réf.: 5250-85 g: S. enterica sous espèce diarizonae (IIIb), réf.: 8013-93 h: S. enterica sous espèce houtenae (IV), réf.: 1357-73 i: S. bongori, ref.: 2790-79 k: S. enterica sous espèce indica (VI), ref.: 4355-84 - 7, 6, 5, 4, et 3: log (montant des molécules d'ADN). Figure 3: Alignement des séquences des fragments amplifiés (nucléotides 1345 à 1644) des 6 groupes de Salmonelles. Figure 4: Amplification grâce aux amorces Iag5 et Iag6 sur deux représentants de chacun des groupes de Salmonelles. Figure 5: Autoradiographie du Southern blot des produits amplifiés des Salmonelles. Figure 6: Détermination du nombre minimal de molécules d'ADN chromosomique pouvant être détecté. Autoradiographie du Southern blot et hybridation sur microplaque. Figure 7: Localisation des oligonucléotides sélectionnés au sein du gène IagA. EXEMPLE I CLONAGE ET SEQUENCAGE DU FRAGMENT D'ADN DE 2,4 kb Ce fragment d'ADN a été sous-cloné en utilisant un fragment de restriction obtenu par coupure avec les enzymes HindIII, à partir de la séquence HindIII de 7,9 kb décrite dans la publication de Popoff et Dion, 1990, dans des dérivés du vecteur m13 (Messing et Vieira, 1982). Après la réalisation de ce clonage, la méthode de dideoxy terminaison de chaine a été mise en oeuvre en utilisant la T7 DNA polymérase modifiée (Sequenase, USB Corp.) et des oligonucléotides synthétiques universels à titre d'amorces. Toutes les extrémités des fragments de restriction utilisés se chevauchaient les unes les autres. Le séquençage de l'ADN a été réalisé au moins 2 fois sur chacun des brins. La séquence de nucléotides a été analysée en utilisant le programme de Lipan et Pearson, 1985. Comme le montre la séquence présentée à la figure 1, deux phases ouvertes de lecture sont contenues dans le fragment séquence; elles sont désignées par les termes iagA (abréviation de invasion associate gene) et iagB. Les deux phases ouvertes de lecture sont transcrites dans la même orientation. Le premier codon ATG (bp 97) de la phase ouverte de lecture de l'iagA, qui est précédé par la séquence 5'-AGAGA-3', est supposé correspondre au site d'initiation de la traduction du gène iagA. Le gène iagA code pour un polypeptide comportant 553 résidus d'acides aminés avec un poids moléculaire calculé de 63026 Da. Une homologie significative a été détectée entre le domaine N- terminal de la protéine IagA et le domaine correspondant à la protéine de régulation de la transcription PhoB (24% d'identité et 52% de similitude pour une superposition de 108 acides aminés) et la protéine PhoP (25% d'identité et 69% de similitude pour acides aminés alignés) de E.coli. Le codon d'initiation ATG du gène iagB (bp 1776) est également précédé par un site potentiel de liaison au ribosome (5'- AGGAAG-3'). Le gène iagB code pour un polypeptide comportant 160 acides aminés et ayant un poids moléculaire calculé de 18369 Da. La comparaison de la séquence de la protéine IagB avec les séquences traduites contenues dans la banque de données Genbank a montré une homologie significative avec la protéine IpgF (43% d'identité et 66% de similitude pour 151 acides aminés alignés). La protéine IpgF est codée par le gène ipgF qui est situé sur le plasmide associé à la virulence de Shiqella flexneri, à l'extrémité 5' du locus mxi-spa (Allaoui et al, 1993). Les protéines mises en évidence de Salmonella enterica sous-espèce enterica sérovariété Typhi auraient donc un rôle dans l'infection par ces bactéries, et notamment dans l'adhésion et la pénétration dans les cellules. EXEMPLE 2 DETECTION SPECIFIQUE DE S. ENTERICA DU GROUPE I Un protocole de détection des sous-espèces de Salmonella par réaction de polymérisation en chaîne (PCR) a été mis au point. Un couple d'oligonucléotides utilisés comme amorce a été défini pour amplifier un fragment de 93 pb d'un gène requis pour l'invasion des cellules HeLa par S. typhi, souche Ty2. Le produit d'amplification a été analysé par une hybridation non radioactive en sandwich sur des plaques de microtitration en utilisant deux oligonucléotides différents selon la procédure décrite par Chevrier et al, 1993, Mol. Cell. Probes 7, 187-197. L'oligonucleotide de capture a été phosphorylé à son extrémité 5' et lié de façon covalente à des puits portant des groupes aminés d'une plaque de microtitration. L'oligonucleotide de détection a été aminé à son extrémité 5' puis marqué avec un biotinyl- N-hydroxy-succinimide ester. Après hybridation, les molécules hybrides ont été détectées par de l'avidine conjuguée à la phosphatase alkaline et à un substrat chromogène. Cette méthode nécessite seulement l'utilisation d'un cycler thermique et d'un lecteur de microtitration conventionnel, et peut être mise en oeuvre sur une large échelle. MATERIELS ET METHODES Souches bactériennes Deux cent vingt huit isolats cliniques (Tableau 1) incluant S. bongori (Sambrook et al, 1989, Molecular cloning, a laboratory manual. Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, N.Y.), S. enterica sous espèce I(116), II(56), IIIa(11), IIIb(30), IV(5) et VI(5) et 16 souches d'Enterobactéries non-salmonelles (Tableau 2) représentant 9 genres différents ont été utilisés dans cette étude. La souche C53 de S. ser. Typhimurium a été utilisée comme contrôle positif, et la souche HB101 de E. coli a été utilisée comme contrôle négatif dans les tests de PCR. Extraction de l'ADN Les souches ont été cultivées sur un milieu LB à 37 C. Afin de procéder à l'extraction rapide de l'ADN, 2 ml de la culture maintenue pendant toute la nuit ont été centrifugés et resuspendus dans 1 ml de TE (tampon mM Tris-HCl à pH8 contenant 1 mM EDTA). Les cellules ont été centrifugées, le culot de centrifugation a été resuspendu dans 500 g1 d'eau distillée stérile et chauffé à 100 C pendant 10 minutes. Finalement, la solution a été centrifugée et le surnageant a été conservé pour des expérimentations en PCR. Amorces oliqonucléotidiques et sondes Les oligonucléotides ont étésynthétisés dans un synthétiseur à ADN cyclone (Millipore-Waters) en utilisant la technologie au phosphoramidite. Les séquences des amorces d'oligonucleotides étaient les suivantes: SS2: 5'-CCGGGCAGATGATACCC-3' et SS28: 5'-TAATGCTTTCCTGGTGC-3'. La sonde oligonucléotidique de capture, SS40: 5'-CCCGAACTATCTCGATCTGTACAATATTATCATT-3' a été phosphorylée à son extrémité 5' avec la T4 polynucléotide kinase (Boehringer) selon la description faite par Sambrook et al, 1989, (Molecular cloning, a laboratory manual. Cold Spring Harbor Laboratory Press, Cold Spring Harbor, N.Y.). La sonde de détection octadecanucléotidique SS41 (5'-GCAGGTGATAACCTTTAA-3') a été synthétisée avec une fonction amino à son extrémité ' en utilisant la méthode au phosphoramidite sur phase solide dans un synthétiseur d'ADN Applied Biosystem 380B puis marquée avec le D-biotinyl-Z-aminocaproic acide-N-hydroxysuccinimide ester (Boehringer) selon la description faite par Tham et ai, 1990, (FEMS Microbiol. Lett. 69, 109-116). Les oligonucléotides de capture et de détection ont été tous les deux purifiés sur une colonne de dessalement rapide HR 10/10 avec le système FPLC (Pharmacia). Expériences de PCR Les réactions d'amplification ont été réalisées dans un volume total de 100 J1 dans un tampon 50 mM Tris-HCl pH 8,5, contenant 4 mM MgC12, 100 pg/ml de sérum alumine bovine, 1UM de chaque amorce, 200 gM de chaque dNTP et 1 U de Taq ADN polymérase (Amersham). Le mélange d'amplification a été recouvert avec 100 1 d'huile minérale et soumis à 10 cycles d'amplification selon la description suivante: les échantillons ont été incubés à 94 C pendant 10 sec pour dénaturer l'ADN, à 60 C pendant 10 secondes pour apparier les amorces à l'ADN et à 72 C pendant 30 sec. pour réaliser la réaction d'extension des amorces appariées, ceci étant suivi de 30 cycles selon le protocole suivant: dénaturation à 87 C pendant 10 sec., appariement à 60 C pendant 10 sec. et extension à 72 C pendant 30 sec. Les cycles thermiques ont été réalisés dans un ensemble chauffant programmable (Thermal ractor Hybaid, UK). Les expériences de PCR ont été réalisées avec 5g1 de solution d'ADN. Chaque expérience comprenait des contrôles négatifs (5 41 de tampon TE) pour chaque groupe de 10 échantillons et à la fin de chaque série. Tests d'hybridation sandwich sur des bandes CovaLink NH Deux protocoles d'hybridation non-radioactive sur des bandes CovaLink NH ont déjà été décrits par Chevrier et al (1993, Mol. Cell. Probes 7, 187-197). Dans le cas présent, une technique d'hybridation sandwich a été utilisée dans la mesure o elle permettait une meilleure sensibilité de la détection. La réaction a été réalisée sur des micropuits recouverts par de l'oligonucléotide SS40 en utilisant une procédure de liaison covalente telle que décrite en détails par Chevrier et al ou Rasmussen, S.R. et al (1991, Anal. Biochem. 198, 138-142). Le fragment d'ADN soumis à la réaction de PCR a été dénaturé directement dans les puits en ajoutant de façon séquentielle 95 1 d'eau distillée, 541 d'échantillon de PCR, 40 41 de sonde de détection et 14 41 de NaOH 1 N par puits. Après 10 minutes, la neutralisation a été effectuée en ajoutant 21 g1 de NaH2PO4 1 M contenant 1% de sarkosyle. Tous les échantillons ont été réalisés en double. Après la neutralisation, la bande a été déposée sur une surface métallique et maintenue dans un four pendant la nuit à C. La concentration finale de la sonde de détection biotinylée SS41 était 0,5 nM. Pendant l'incubation dans le four, il est préférable de ne pas laisser les puits non utilisés vides, mais de les remplir avec de l'eau de façon à obtenir des échanges thermiques homogènes. Les micropuits ont été lavés 5 fois à température ambiante avec du TBS-Tw (0,15 M NaCl, 10 mM tampon Tris HC1 à pH 8, 1%. Tween 20). 100 41 de conjugué alkaline phosphatase-extravidine (Sigma) dilués à 1 4g/ml dans du TBS-Tw contenant 1% de sérum albumine bovine ont été ajoutés par puits. Puis, la bande a été incubée à température ambiante pendant 1 h., lavée 5 fois avec du TBS-Tw et finalement 200 41 de diéthanolamine 1 M à pH 9,8 contenant lmM de MgCl2 et 1 mM de para-nitrophényl phosphate ont été ajoutés. La réaction de l'enzyme a été conduite pendant 30 minutes à 2 heures. L'absorbance a été mesurée à 405 nm en utilisant un lecteur de microplaque (Dynatech). Le signal obtenu avec la solution standard du fragment d'ADN amplifié (800 fm/puits) de S. ser. Typhimurium souche C53 a été considéré comme représentant 100% et utilisé comme référence pour chaque test d'hybridation. Les valeurs des blancs correspondent à l'absorbance moyenne mesurée dans des puits recouverts par l'oligonucléotide SS40 incubé seulement avec 0,5 nM de sonde oligonucléotidique SS41 biotinylée. RESULTATS Optimisation de la méthode Les amorces et les sondes ont été choisies dans la séquence iagA. Différents couples d'amorces ont été testés pour optimiser la technique d'hybridation sandwich sur des microplaques CovaLink. Le couple d'amorces choisi (SS2 et SS28) a permis l'amplification spécifique de la région de 93 pb de l'ADN génomique de Salmonella. En utilisant ce couple d'amorces, on a mis en évidence qu'une concentration standard de MgC12 (1,5-2 mM) a conduit à un résultat d'amplification relativement inintéressant et qu'une concentration de 4 mM en MgCl2 était nécessaire pour obtenir une amplification efficace. Des oligonucléotides internes, SS40 et SS41, ont été utilisés dans un test d'hybridation non radioactif à titre de sonde de capture et de sonde de détection respectivement. Spécificité de la technique La spécificité de la méthode pour la détection des salmonelles a été évaluee avec 228 souches de Salmonella (Tableau 1) et 16 souches de bactéries hétérologues (Tableau 2). Les résulats sont résumés dans le tableau 3. Edwardsiella tarda, Klebsiella pneumoniae, des espèces d'Enterobacter et d'Acinetobacter, Pasteurella, Vibrio harveyi, Serratia marcescens et de façon plus importante des espèces de Citrobacter et tous les E. coli ont donné un signal d'hybridation inférieur à 20%. Sur la base de cette valeur, il a été conclu que toutes les souches de Salmonella appartenant à la sous- espèce I pouvaient être detectées par la présente méthode. De plus, seulement une souche (souche 3975-83) des 56 souches de la sous-espèceII et 3 souches des 11 souches de la sous-espèce IIIa ont donné un signal positif. Salmonella bonqori et les souches appartenant aux sous-espèces IIIb, IV et VI n'étaient pas detectables. Niveau de détection de la technique avec les bactéries entières Des dilutions au 1/o10ème d'une suspension de la souche C53 de S. ser. Typhimurium (de 109 à 10-2 cellules/ml) ont été faites pour estimer le nombre minimum de bactéries qui pouvait être détecté par la PCR suivi de la technique d'hybridation non radioactive. L'ADN a été extrait de chaque suspension calibrée, en utilisant la technique d'extraction rapide par ébullition. Les résultats obtenus montrent clairement que la technique d'extraction rapide de l'ADN par la simple ébullition de la suspension avant la réaction de PCR, est une technique efficace. En effet, elle permet la détection de seulement une unité cfu. Tableau 1: Sous-espèces de Salmonella utilisees pour évaluer la spécificité des essais d'hybridation de l'ADN. Microorganisme testé N0 des isolats N des serovars Salmonella enterica subsp enterica I 116 43 serovar Adelaïde 1 Agona 2 Altona 1 Angoda 1 Bardo 2 Blocklev 1 Boxismorbificans 3 Braenderup 4 Brandenburg 1 Bredenev 1 Broughton 2 Cerro 1 Chester 1 Coeln 1 Concord 1 Dakar 1 Derbv 2 Enteridis 28 Georgia 1 Hadar 1 Heidelberg 4 Ibadan 2 Indiana 1 Infantis 5 Lexington 1 London I Mbandaka 1 Montevideo 6 Moscow 1 Ohio 1 Orion 1 Panama 3 Paratyphi B 2 Saintpaul 1 Typhimuriumn 13 Tvphisuis 1 Vaertan 1 Veneziana 1 Vinohrad)v 1 Virchow 10 Wien! WoodinNille 1 Yolo 1 Salmonella enterica subsp salamae II 56 56 Salmonella enterica subsp arizonae IIIa Il 29 Salmhnonella enterica subsp diarlzonae IIIb 30 5 Salmonella enterica subsp houtenae IV 5 5 Salmonella enterica subsp indica VI 5 5 Sa/nonella bongori 5 5 (initialement S. enterica subsp. bongori V) Tableau 2: Bactéries hétérologues utilisées dans le test d'hybridation de l'ADN Genre Espèces Nombre d'isolats Escherichia coli 4 Edwarsie/la tarda 1 Citrobacter amalonaticus 1 freundii 1 Klebsiella pneumoniae 1 Enterobacter agglomerans 1 asburiae 1 hormoechei 1 Pasteurella multocida 1 Acinetobacter Iwoffii 1 haemolyticus 1 Vibrio harveyi 1 Serratia marcescens 1 Tableau 3: Souches cliniques de bactéries et témoins testés dans un essai d'hybridation Sandwich S.enterica S. enterica S. enterica S. enterica S. enterica S. enterica S. bongori Non Témoin subsp. subsp. subsp. subsp subsp. subsp. Salmonella sans ADN enterica salamae arizonae diarizonae houtenae indica activité (%) %-20% 116 1 3 0 0 0 0 0 0 19% 0 51 8 12 4 4 5 9 0 > blanc été extrait de 10 souches représentant les 6 sous- espèces de Salmonella enterica et l'espèce Salmonella bonqori, puis des quantités calibrées d'ADN ont été soumises à des réactions de PCR suivies par une hybridation sandwich. Les résultats sont rapportés à la figure 2. Il a été démontré que le signal d'hybridation obtenu avec 107 molécules d'ADN de Salmonella bonqori ou des sous-espèces II, IIIa, IIIb, IV et VI de Salmonella enterica est plus faible que le signal d'hybridation observé avec 103 molécules d'ADN des souches de la sous- espèce I. Cependant, il est important de noter que l'isolat 3975-83 (sous-espèce II) a donné le même signal d'hybridation que les souches appartenant aux sous-espèces I. DISCUSSION L'amplification par PCR permet une détection très sensible de séquences d'ADN spécifique. La sensibilité de l'amplification dépend essentiellement du nombre de copies de l'ADN cible, de la pureté de l'échantillon à analyser, de la méthode d'extraction de l'ADN, et de la sensibilité de la méthode utilisée pour détecter les produits de PCR. La visualisation des produits de PCR par une coloration au bromure d'éthidium dans un gel d'électrophorèse, n'est pas compatible avec l'utilisation en routine de la technique et n'est pas suffisamment sensible. La sensibilité peut être améliorée par l'utilisation de la PCR double ou de sondes d'ADN avec une hybridation en Dot blot ou en Southern blot. CenpndA.nt 1s DrpCRAlh s r sensible à la contamination par de l'ADN et les techniques d'hybridation Dot blot ou Southern blot ne sont pas appropriées pour l'automatisation. L'hybridation sur microplaque offre donc une technique appropriée pour la détection et la quantification de fragments amplifiés par PCR. L'attachement covalent simple des acides nucléiques à des micropuits représente une variante intéressante à l'adsorption passive et une amélioration importante pour la détection de fragments amplifiés par PCR sur des micropuits. Il est connu que les souches de Salmonella provoquant des infections chez l'homme appartiennent essentiellement à la sous-espèce I. En effet, plus de % des isolats cliniques chez l'humain appartiennent à cette sous-espèce (Rowe, B. , 1987, Salmonella surveillance. Reports received from centers participating in the WHO programme. World Health Organization London). De plus, en 1991, le "Centre National d'Etudes Vétérinaires et Alimentaires" de Paris (France) rapportait [Corbion, B. et al, 1991, Inventory of Salmonella] que dans les années précédentes, la plupart des souches isolées chez l'animal dans la nourriture ou dans l'environnement en 1988 et 1989 (c'est à dire, 18832 souches) appartient à la sous-espèce I (99,2%). Les résultats rapportés ici ont permis de définir une méthode fondée sur l'amplification par PCR pour la détection de souches pathogènes de Salmonella. Un couple d'amorces, SS2 et SS28, et un couple de sondes, SS40 et SS41 ont été sélectionnés à partir d'un gène nécessaire à l'invasion des cellules HeLa par Salmonella ser. Typhi souche Ty2. En utilisant la combinaison entre la technique de PCR et l'hybridation sandwich non radioactive sur microplaque, toutes les Salmonella de la sous-espèce I ont été détectées. La limite de détection était inférieure à un seuil représenté par 10 cellules par tube de PCR, ce qui est conforme aux résultats obtenus par d'autres techniques de PCR similaires. Etant donné la parenté des acides nucléiques entre les membres des enterobactéries, il était important de contrôler la spécificité de ces nouvelles amorces et sondes avec les genres d'enterobactéries les plus susceptibles de conduire à des réactions de type "faux-positif". Des résultats obtenus, on peut conclure qu'aucune réaction de faux- positif ne peut avoir lieu lorsque les conditions de la PCR et de l'hybridation décrites précédemment sont suivies. Il est intéressant de noter que la souche Salmonella 3975-83 (sous-espèce II) présentait un signal d'hybridation identique à celui obtenu avec les isolats appartenant à la sous-espèce I. Cette souche a été isolée en 1983 à partir des selles d'un patient humain en Grande-Bretagne. Sur la base des caractéristiques biochimiques, cette nouvelle sérovariété a été classée dans la sous-espèce II mais a été considérée comme une souche atypique puisque sa présence dans la gélatinase n'a pas été détectée (Le Minor, L. et al, 1984, Supplement No. XXVII, 1983, to Kauffmann-White Scheme, Ann. Microbiol. (Institut Pasteur) 135 B, 45-51). A la lumière des résultats rapportés ici, la position taxonomique de la souche 3975-83 devrait être ré-examinée en utilisant la technique d'hybridation ADN-ADN. Les données présentées ici indiquent que la méthode d'hybridation basée sur l'utilisation d'un gène nécessaire à l'invasion des cellules HeLa par Salmonella ser. Typhi souche Ty2 peut distinguer les souches de la sous-espèce I des Salmonella des autres bactéries enteriques, y compris E. coli. L'hybridation non-radioactive sur une microplaque Covalink NH est sensible et appropriée pour l'analyse d'un grand nombre d'échantillons. EXEMPLE 3: DETECTION DE L'ADN DE SALMONELLA AMPLIFIE PAR HYBRIDATION SANDWICH Séquence des oligonucléotides Les fragments d'ADN choisis sont les suivants (voir position sur la séquence de la figure 1): Partie Cterminale position Iagl: 5'-TA TTA AGT ATG CAG GTT ATG - 3' 1424-1443 Iag2: 5'-AGA GAA TTT CTG GAA AGT GAA- 3 ' 1585- 1605 Iag3: 5'-ATA TCC ACG CAG GAA ATA ACA GGA CTT -3' 1495-1521 Iag4: 5'-GAG CGT GCC TTA CCG ACG ATA-3' 1564-1584 Iag5: 5'-GCA GGG ATC ACT AAG CTG TG-3' 1318-1337 Iag6: 5'-CGT GGG CAA CCA GCA CTA ACG-3' 1637-1657 Slml: 5'-CG GGT TAA AGG TTA TCA CCT-3' 709-728 Slm2: 5'-AG CAT GGC GCA AAT GGG-3' 1014-1031 Slm3: 5'-GCA CCA GGA AAG CAT TAA GTT GAT AGA ACA C-3' 732-762 Slm4: 5'-CTT CGC TGG GAC ACA AAG CA-3' 823-842 Préférentiellement, le couple d'amorces Iag5 (sens) et Iag6 (antisens) dirige l'amplification d'un fragment de 340bp, le couple Slml (sens) et Slm2 (antisens) dirige l'amplification d'un fragment de 323bp (figure 3). La figure 4 montre l'efficacité de l'amplification du couple d'amorces Iag5 et Iag6 sur 2 représentants de chacun des groupes de Salmonelles. Procédé de détection. Un format de détection par hybridation sandwich a été utilise. Deux oligonucleotides s'hybrident simultanément au fragment amplifié dénaturé. L'un d'eux appelé sonde de capture est fixé de façon passive (mais peut aussi être fixé de façon covalente) à la surface d'un puits de plaque de microtitration 96 puits. L'autre appelé sonde de révélation est marqué par un élément facile à mettre en évidence. La sonde de révélation est libre dans le tampon d'hybridation. Les sondes de capture et de révélation sont complémentaires de 2 régions différentes situées à l'intérieur du fragment amplifié. La sonde de détection dans le cas ici décrit, est liée à un marqueur enzymatique notamment une peroxydase et va servir de sonde de révélation. C'est le cas préférentiellement des oligonucléoties Iag3 et Slm3. D'autres oligonucléotides peuvent être fixes à un support solide de type microplaque, un support particulaire ou membranaire et servir de sonde de capture, ceci particulièrement pour les oligonucléotides Iag4 et Slm4. Conditions expérimentales: 1) Préparation de l'ADN des Salmonelles Par la méthode d'ébullition en présence de Chelex (Chelex 6%, SDS 0.1%, NP40 1%, Tween 20 1%), on obtient les séquences d'ADN. Ce réactif est commercialisé par Biorad et utilisé selon le protocole du fabricant (ref. Walsh et al. 1991. BioTechniques 10: 506-513). 2) Amplification Selon la méthode initialement décrite par Saiki et telle qu'exposée par exemple dans le brevet européen EP 0201184. La PCR est réalisée en utilisant le mélange réactionnel suivant: mM KCl mM Tris-HC1 pH 8.3 1,5mM MgC12 4M désoxyribonucleotides (dCTP, dATP, dGTP) 250 gM d'UTP pmoles de chacune des amorces lOng ADN 1 unité d'Uracyl N Glycosylase 1 unité de Taq polymerase. Le mélange réactionnel a été réalisé en utilisant 1041 de la solution contenant l'ADN à amplifier sous un volume de 10041. Le dUTP et l'UNG sont utilisés en système de décontamination (Brevet Life Technologies European Patent Application 0 401 037). Le thermocycler utilisé est le 9600 de Perkin Elmer. Après une incubation à 50 C pendant 2 min pour permettre l'action de l'UNG et une dénaturation à 95 C pendant 5min, les cycles de température utilisés sont les suivants: - 5 cycles (95 C 15 sec, 50 C 15 sec, 72 C 15 sec) - 35 cycles (95 C 15 sec, 57 C 15 sec, 72 C 15 sec) 3) Visualisation de la réaction d'amplification 3-1) Marquage de la sonde de révélation Les sondes sont marquées à la peroxydase de raifort (ref. PCR protocols: a guide to methodes and application; Academic press (1990), 15, p4513-4534) et l'activité de l'enzyme est révélée en colorimétrie. 3-2) Gel d'agarose coloré au BET et hybridation sur membrane Après amplification, 1041 du produit d'amplification sont déposés sur gel d'agarose et l'ADN est transféré sur membrane selon les techniques classiques (Maniatis). La membrane est préhybridée, 30 min à 68 C en tampon d'hybridation (10X Denhart, 6X SSC, 0,1%SDS) puis hybridée à 42 C pendant 3h avec 60 ng de sonde par ml de tampon d'hybridation. Un lavage est ensuite effectué selon les étapes suivantes: - 2 fois 10 min en 2 X SSC -0,1%SDS à température ambiante, - 1 fois 30 min en 0,1 X SSC 0,1% SDS à 42 C, - 2 fois 10 min en 2 X SSC à température ambiante. Révélation: La membrane est épongée entre deux feuilles de papier absorbant (papier Whatman 3MM) et *posée dans un bac propre et sec. Le réactif de détection Amersham (réactif de détection ECL RPN 2105) est préparé extemporanément volume à volume; 30 ml de volume total pour une membrane 5 x 8 cm. Une cassette pour autoradiographie est obtenue en fixant une feuille de papier absorbant (papier Whatman 3MM) au fond. Toutes ces étapes peuvent se faire à la lumière. Ensuite en chambre noire. On baigne la membrane dans le réactif de détection pendant 1 min, côté ADN vers le haut, on égoutte rapidement la membrane, on la place dans la cassette, côté ADN vers le haut, on pose dessus une feuille en plastique transparent (sinon la membrane se colle sur le film) et on met un film radiographique par dessus (film X-OMAT KODAK). L'exposition est réalisée pendant 30 min à température ambiante puis le film est développé par les techniques de révélation classique (révélateur, eau, fixateur). 3-3) microplaque 3-3-1) Coating de l'oligonucléotide de capture Il peut se faire par adsorption (Cook et ai, NAR, 16: 4077-4095 (1988) ou couplage covalent (Rasmussen, S.R. et ai, 1991. Analytical Biochemistry 198, 138-142). 3-3-2)Hybridation en microplaque et lecture 41 du produit d'amplification ont été dénaturés par addition volume à volume d'une solution 200mM NaOH, 4OmM EDTA. Les microplaques dont la surface des puits est revêtue de la sonde de capture, ont été préhybridées dans un tampon d'hybridation contenant 10XDenhart, 6XSSC, 0,1% SDS. Puis la microplaque a été vidée et chacune des cupules a reçu 20041 de tampon d'hybridation renfermant le fragment amplifié dénaturé et la sonde de révélation à la concentration de 10ng/4l. L'incubation a eu lieu pendant une heure à 37 C et sous agitation. Après lavage (solution de lavage 10X:100mM Tris, 3M NaCl, 1% Tween 20, pH 7,4), l'activité de la peroxydase liée à la sonde a été détectée en colorimétrie en présence d'un substrat coloré. Pour ce faire, 20041 d'une solution 40mM citrate trisodique, 0, 03% H20 30%, 7,5mg/ml d'orthophenylenediamine (OPD) ont été distribués dans chacun des puits. La microplaque a été incubée 30min à l'obscurité et à 37 C. 5041/puits d'une solution 4N H2SO4 ont été ajoutés pour bloquer la réaction. La densité optique a été déterminée à une longueur d'onde de 492nm (référence à 620nm). 4) Séquençage des produits PCR et alignement manuel des séquences. Selon les techniques classiques, en utilisant par exemple un automate "373 DNA sequencer" d'Applied Biosystem et le kit "dye terminator" d'Applied. Résultats Le modèle exemplifié est préférentiellement le système d'oligonucléotides suivant: Iag5 amorce sens-Iag6 amorce antisens Iag3 sonde de révélation et Iag4 sonde de capture. (il est à noter que Iag4 peut tout aussi bien être marquée et être utilisée en sonde de révélation). Etude de Spécificité Elle a porté sur l'ensemble des souches bactériennes listées dans les Tableaux 4 et 5. L'amplification de l'ADN extrait des 45 souches de Salmonelles testées a généré un fragment de la taille attendue (cf. Fig. 5). Les Southern blots de l'ensemble des produits amplifiés ont été hybrides avec la sonde oligonucleotidique interne Iag 3 marquée à la peroxydase. Aucune des souches non salmonelles n'a donné lieu à une hybridation avec une sonde peroxydase réalisée sur membrane selon le protocole décrit plus haut. Les mêmes produits d'amplification ont été testés en format microplaque. Le cut-off a été arbitrairement fixe à 0.050. Tous les représentants de chacun des groupes de Salmonelles donnent une valeur de densité optique supérieure à 0.050 (tableau 6). Sensibilité Pour déterminer le nombre minimal de molécules d'ADN chromosomique de salmonelles pouvant être détecté, une gamme de dilution d'ADN chromosomique purifié a été amplifiée. 5 molécules sont visibles sur l'autoradiographie du southern blot et détectées en hybridation microplaque: la valeur obtenue en colorimétrie est supérieure au Cut-Off (Figure 6). Les oligonucléotides sélectionnés pour la réalisation de cet exemple ont été localisés sur la séquence du gène IagA (figure 7). SOUCHES DE SALMONELLES ETUDIEES No [ Souches Sérotype Groupe 1 Sa/monella Marseil//le 2 Salmonella Nyanza I 3 Salmonella Poona 4 Salmonella Kampala Salmonella Taksony I 6 Salmonella Teshie I 7 Salmonella Indiana I 8 Salmonella enteritidis I 9 Salmonella Kentucky I Salmonella Napoli 11 841 1 1:a:d:en 215 I 12 1703 K 41:2:15 I 13 950 - 71 43: d:z39 I 14 10-65 44: 24, 223: - I 3209-81 45: z 23 I 16 5331/86 62: z 29:- lia 17 3064-4 / 252 41: k:- Illa 18 594-54 38: z 54: - lila 19 1694 cdai 426 63: z 4, z32: - Ilila So 50/ 16 62: f, z 51: - lia 21 5251-85 58: r: z 53 Illb 22 1758-76 6,14: z 10: enx 215 I IIb 23 453-68 16: liv: z53 Ilib 24 4305-57 1 6: li(v): z 35 IlIlb 1698-75 1: liv: z Illb 26 8275-94 47: r: enx 215 IlIlb 27 8283- 94 53: z 10: z lilb 28 cdc 456-5 /93 40: i: 1, 5, 7 IIIb 29 8284-94 60: i: z lilb 1 693 K 38: k:z 55 Ilib 31 170748 f:z 51:- IV 32 7231 / 89 45: z 36, z 38 IV 33 6887/6048: f, z51:- IV 34 1357 /73 43: z4, z 24: - IV 1550K 16:z 4, z23:- IV 36 Salmonella Bongor 261 -66 48: z35: - V 37 Salmonella Camdeni 2022 - 77 44: r: - V 38 4985 - 85 48:z39:- V 39 7688 - 9166:z39:V 1387- 7340: a: - V 41 1941 - 77 6,7:z 41: 1,7 Vl 42 1449 K45 a enx Vl 43 4355 84 1,6,14,25 a:e.n,x VI 44 1711 K 11 b enx VlI 1688 K 1,6,14,25 Z 10 1, 12.7 Vl TABLEAU 4 SOUCHES NON SALMONELLES N o Nom I Identification 1 Klebsiel/a oxytoca 0059 SDP 2 Klebsiella pneumoniae 0054 SDP 3 Acinetobacter baumanii 0033 SDP 4 Proteus mirabilis RP402 Serratia marcescens 0042 SDP 6 Enterobacter agglomerans 0067 SDP 7 Citrobacter diversus 0068 SDP 8 Pseudomonas aerugminosa 0011 SDP 9 Enterobacter aerogenes 0066 SDP Escherichia coli0131 SDP 11 Enterocoque faeca/is 76117 12 Proteus mirabilis AP03 13 Enterocoque faecalis 76117 14 Enterobacter cloacae 0060 SDP Mycobacterium avium 6 16 Mycobacterium tuberculosis H 37 RV 17 Listeria monocytogenes 1/2 LG3 TABLEAU 5 DETECTION SUR MICROPLAQUE ECHANTILLONS DO à 420 nm 2 Nyanza gpe I 3.029 3 Poona gpe I 3.103 11 gpe Il 3.155 12 gpe Il 0.751 18 gpe iII a 3. 139 gpe III a 3.068 21 gpe III b 3.161 gpe III b 3. 201 31 gpe IV 0.272 gpe IV 0.527 36 gpe V 1.868 gpe V 3.347 gpe VI 0.900 Klebsie/la oxytoca 0.022 Klebsie/la pneumoniae O. 017 Acinetobacter baumanii 0.024 Proteus mirabilis 0.019 Serratia marcescens 0.019 Enterobacter agglomerans 0.023 Mycobacterium avium n 6 0.025 Mvcobacterium tuberculosis H 37 RV 0.020 Listeria monocytogenes 1/2 LG3 0.015 Témoin eau 0.018 Témoin eau 0. 022 TABLEAU 6 REVENDICATIONS 1. Séquence de nucléotides participant à l'invasion de cellules HeLa en culture par des bactéries de l'espèce Salmonella enterica sous-espèce enterica sérovariété Typhi (dénommée S. Typhi), caractérisée en ce qu'il s'agit de la sequence iagA comprise entre les nucléotides 97 et 1755 de la séquence représentée à la figure 1 ou iagB comprise entre les nucléotides 1776 et 2255 de la séquence représentée à la figure 1. 2. Oligonucléotide issu d'une sequence selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il répond à l'une des sequences suivantes: Iagl: 5'TA TTA AGT ATG CAG GTT ATG - 3' Iag2: 5'-AGA GAA TTT CTG GAA AGT GAA- 3 ' Iag3: 5'-ATA TCC ACG CAG GAA ATA ACA GGA CTT -3' Iag4: 5'-GAG CGT GCC TTA CCG ACG ATA-3' Iag5: 5'-GCA GGG ATC ACT AAG CTG TG-3' Iag6: 5'-CGT GGG CAA CCA GCA CTA ACG-3' Slml: 5'-CG GGT TAA AGG TTA TCA CCT-3' 1Slm2: 5'-AG CAT GGC GCA AAT GGG-3' Slm3: 5'-GCA CCA GGA AAG CAT TAA GTT GAT AGA ACA C-3' 1Slm4: 5'-CTT CGC TGG GAC ACA AAG CA-3' SS28: 5'-TAA TGC TTT CCT GGT GC-3'. Iag7: 5'-T ACG GCA TGG GCT GAT TGC T-3' Iag8: 5'-T TAC GCT ATC GCC CAG CAG CAG GA-3' Iag9: 5'-T GGT CAT AAC CGA GAT GGT TCA ACC GAT C-3' IaglO: 5'-A CAG TTG TTA CAG GAT CCC T-3' 3. Oligonucléotide caractérisé en ce qu'il est issu de la séquence de nucléotides IagA selon la revendication 1 et en ce qu'il est sélectionné parmi les séquences utilisables comme amorces pour la détection spécifique de Salmonella enterica du groupe I ou pour la détection d'une séquence de nucléotides ainsi amplifiée. 4. Oligonucléotide selon la revendication 3, caractérisé en ce qu'il répond a la séquence suivante: SS28: 5'-TAA TGC TTT CCT GGT GC-3'. 5. Couple d'oligonucléotides selon la revendication 2, caractérisé en ce qu'il s'agit de l'un des couples suivants: Iag5 (sens): 5'-GCA GGG ATC ACT AAG CTG TG-3' et Iag6 (antisens): 5'-CGT GGG CAA CCA GCA CTA ACG-3', ou Slml (sens): 5'-CG GGT TAA AGG TTA TCA CCT- 3'et Slm2 (antisens): 5'-AG CAT GGC GCA AAT GGG-3'. 6. Séquence de nucléotides capable de s'hybrider avec Salmonella enterica et/ou Salmonella bonqori, caractérisée en ce qu'elle répond à l'une des séquences suivantes et en ce qu'elle est marquée: Iag3: 5'-ATA TCC ACG CAG GAA ATA ACA GGA CTT -3' ou Iag4: 5'-GAG CGT GCC TTA CCG ACG ATA-3' ou Slm3: 5'-GCA CCA GGA AAG CAT TAA GTT GAT AGA ACA C-3' ou Slm4: 5'-CTT CGC TGG GAC ACA AAG CA-3'. 7. Séquence de nucléotides selon la revendication 6 (ou sonde), caractérisée en ce que la sonde Iag3 ou la sonde Slm3 est une sonde de révélation de la présence d'une sequence de nucléotides amplifiée et en ce que la sonde Iag4 ou la sonde Slm4 est une sonde de capture d'une séquence de nucléotides amplifiée. 8. Utilisation des oligonucléotides selon la revendication 2, comme amorces pour l'amplification d'une sequence d'ADN ou d'ADNc de Salmonella enterica et/ou de Salmonella bonqori comprise dans une séquence de nucléotides selon la revendication 1 ou complémentaire d'une telle séquence, ou comme sonde pour la détection d'une séquence de nucleotides amplifiée. 9. Utilisation des couples d'oligonucléotides selon la revendication 5, comme amorces pour l'amplification de séquences de nucléotides d'une bactérie de l'espèce S. enterica et/ou S. bonqori, groupe I, II, III, IV, V ou VI. 10. Ensemble d'oligonucleotides utilisables pour la détection de bactéries S. enterica et/ou S. bonqori après amplification de l'ADN génomique ou complémentaire de S. enterica et/ou de S. bongori, caractérisé en ce qu'il comprend: - un couple d'oligonucleotides selon l'une quelconque des revendications 4 ou 5, capables d'hybrider dans des conditions stringentes avec l'ADN génomique ou l'ADNc de S. enterica et/ou de S. bongori, - une sonde selon la revendication 6. 11. Ensemble d'oligonucleotides utilisables pour la détection in vitro dans un échantillon biologique, de souches de Salmonella enterica et/ou de Salmonella bonqori appartenant à l'un des groupes I, II, III, IV, V ou VI, caractérisé en ce qu'il contient les oligonucléotides suivants: - la séquence Iag5 (5'-GCA GGG ATC ACT AAG CTG TG-3' et Iag6 (5'-CGT GGG CAA CCA GCA CTA ACG-3') utilisables en tant qu'amorces pour l'amplification et - la sequence Iag3 (5'-ATA TCC ACG CAG GAA ATA ACA CGA CTT -3') utilisable comme sonde de révélation et la séquence Iag4 (5'-GAG CGT GCC TTA CCG ACG ATA-3') utilisable comme sonde de capture. 12. Ensemble d'oligonucléotides utilisables pour la détection spécifique in vitro dans un échantillon biologique, de S. enterica du groupe I, caractérisé en ce qu'il comprend les oligonucléotides suivants: SS2 (5'CCGGGCAGATGATACCC-3' et SS28 ('-TAATGCTTTCCTGGTGC-3'). 13. Protéine IagA, caractérisée en ce qu'elle est codée par la séquence de nucléotides iagA selon la revendication 1. 14. Protéine IagA selon la revendication 13, caractérisée en ce qu'elle répond à l'enchaînement d'acides amines compris entre les acides aminés i et 553 de la séquence de la figure 1. 15. Protéine IagB, caractérisée en ce qu'elle est codée par la séquence de nucléotides iagB selon la revendication 1. 16. Protéine IagB selon la revendication 15, caractérisée en ce qu'elle répond à l'enchaînement d'acides aminés compris entre les acides aminés 554 et 713 de la séquence représentée à la figure 1. 17. Procédé pour la détection in vitro dans un échantillon biologique, de séquences de nucléotides Salmonella enterica, préalablement amplifiées, par exemple par PCR et dénaturées, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes de: - dénaturation de la séquence de S. enterica amplifiée, - mise en contact des séquences de nucléotides amplifiées dénaturées de S. enterica, avec une sonde de capture et une sonde de révélation obtenues à partir des oligonucléotides selon l'une quelconque des revendications 2, 6 ou 7 dans des conditions permettant l'hybridation desdites sondes de capture et de révélation avec la susdite séquence de nucléotides amplifiée de S. enterica, la sonde de capture étant fixée à la surface d'un puits d'une plaque de microtitration et la sonde de révélation étant marquée et libre dans le tampon d'hybridation; incubation du mélange réactionnel, pendant un temps suffisant pour permettre la réaction d'hybridation; - lavage pour éliminer les oligonucléotides n'ayant pas réagi; - révélation des sondes de révélation ayant hybride aux séquences de nucléotides amplifiées. 18. Procédé de détection selon la revendication 17, caractérisé en ce que la sonde de capture est tl'ol1i;gonléen+t i e T Ig At la s d...- Ad1a, - - -. - - --- --7- ---- V.--.,41. l'oligonucléotide Iag3 et en ce que la détection est réalisée conformément aux étapes suivantes: - dénaturation d'un volume 10 1 de la séquence amplifiée sont dénaturés par addition volume à volume d'une solution 200 mM NaOH, 40mM EDTA, - préhybridation des microplaques dont la surface des puits est revêtue de la sonde de capture, dans un tampon d'hybridation approprié, - libération de la microplaque et remplissage de chacune des cupules avec 200p1 de tampon d'hybridation renfermant le fragment amplifié dénaturé et la sonde de révélation marquée à la peroxydase à la concentration de 10ng/41, - incubation du mélange pendant une heure à 37 C sous agitation, - lavage du mélange ayant réagi avec une solution de lavage 10X (100mM Tris, 3M NaCl, 1% Tween 20, pH 7,4), - détection de l'activité de la peroxydase liée à la sonde par colorimétrie en présence d'un substrat coloré. 19. Procédé de détection selon la revendication 18, caractérisé en ce que l'activité de la peroxydase est détectée par mise en oeuvre des étapes suivantes: - dépôt de 20041 d'une solution 40mM citrate trisodique, 0,03% H20 30%, 7,5mg/ml d'orthophenylenediamine (OPD) dans chacun des puits contenant le mélange de réaction, - incubation de la microplaque pendant 30min à l'obscurité et à 37 C, - bloquage de la réaction par addition de 5041/puits d'une solution 4N H2SO4, determination de la densité optique à une longueur d'onde de 492nm (référence a 620nm).