Brevet FR2732022A1 — publié le 19960927

Domaine technique La présente invention concerne les composés à base de silicium biologiquement actifs et en particulier un procédé d'extraction de composés de silicium biologiquement actifs à partir d'algues, le procédé de localisation de tels composés dans des parties spécifiques des algues et le procédé de culture des algues utilisées pour l'extraction des composés. Etat de la technique antérieure Le silicium, élément très répandu dans la nature est généralement connu sous ses formes inorganiques naturelles telles que la silice et les silicates, ou encore sous la forme de polymères synthétiques, les silicones. Ces composés siliciés sont très peu ou pas solubles en milieu aqueux ce qui explique leur faible incidence au niveau des organismes vivants. Les travaux des demandeurs ont montré que les composés siliciés pouvaient constituer une forme de silicium assimilable par l'organisme (par opposition au silicium minéral ou aux silicones) à condition de posséder la propriété d'exister en solution aqueuse sous forme d'oligomères solubles de faible poids moléculaire. En outre, une autre caractéristique nécessaire à l'activité de ces oligomères en solution aqueuse est de présenter de nombreuses fonctions Si-OH. Il ressort ainsi que les propriétés biologiques de ces composés siliciés assimilables par l'organisme, ne sont observées que s'ils forment en solution des oligomères solubles, résultant d'un enchaînement de liaisons siloxanes Si-O-Si, riches en fonctions Si-OH. L'espèce chimique impliquée dans la plupart des mécanismes biologiques mentionnés ci-dessus est une forme soluble du silicium, l'acide silicique, de formule Si(OH)4. Mais, étant donnée sa très forte propension à se polycondenser pour former de la silice, ce composé doit être stabilisé immédiatement après extraction. Une difficulté rencontrée par les demandeurs a été d'obtenir des composés à base de silicium dans lesquels le silicium est lié par des liaisons susceptibles d'être hydrolysées pour obtenir des composés biologiquement actifs possédant une ou plusieurs fonctions Si-OH. Ce type de composés peut évidemment être synthétisé mais il est plus avantageux de pouvoir extraire directement ces composés à partir des végétaux. Malheureusement, tous les végétaux ne contiennent pas ce type de composés à base de silicium. Exposé de l'invention L'idée de base qui a prévalu dans la genèse de cette invention est fondée sur une double constatation; à savoir que d'une part, il y a équivalence qualitative entre le contenu minéral du liquide physiologique humain et le contenu de l'eau de mer, et d'autre part, il y a analogie des mécanismes de multiplication cellulaire entre les tissus embryonnaires humains et les tissus d'origine algale. C'est pourquoi les buts principaux de l'invention sont de fournir des composés organiques de silicium biologiquement actifs d'origine algale, et de localiser précisément les parties des algues contenant lesdits composés organiques de silicium biologiquement actifs. Encore un autre but de l'invention est de réaliser l'extraction à partir d'algues de composés organiques de silicium biologiquement actifs. Encore un autre but de l'invention est de réaliser la culture d'algues à partir desquelles peuvent être extraits des composés de silicium biologiquement actifs. L'objet principal de l'invention est donc un composé organique de silicium biologiquement actif de formule générale: R2 R1 Si R4 R3 dans laquelle Ri, R2, R3 et R4 sont des radicaux organiques dont un au moins est hydrolysable, du type -X- R', X étant un hétéro-atome et R' étant H ou un radical organique, le composé étant un extrait d'origine algale provenant essentiellement des organes reproducteurs ou des tissus jeunes. Un autre objet de l'invention est une méthode de localisation des parties d'algues à partir desquelles peut être extrait le composé selon l'invention comprenant les étapes suivantes effectuées à partir d'un échantillon desdites parties d'algues: fixation de l'échantillon dans un bloc de résine polymérisée, découpe de coupes fines dans le bloc de résine polymérisé, et micro-analyse d'une des coupes par spectrométrie pour détecter les parties contenant du silicium selon une concentration supérieure à un seuil prédéterminé. Encore un autre objet de l'invention est une méthode d'extraction des composés organiques de silicium selon l'invention comprenant les étapes consistant à provoquer l'éclatement des cellules des parties d'algues contenant les composés à extraire, éliminer les épaississants par précipitation, stabiliser dans les composés organiques de silicium les liaisons Si-OH naturelles ou obtenues par hydrolyse des liaisons Si-OR', et purifier les concentrats résultant de la stabilisation par ultra-centrifugation. Encore un autre objet de l'invention est un procédé de culture d'algues à partir desquelles sont extraits les composés organiques de silicium dans lequel un plant d'algue dont on veut réaliser la culture est coupé en une pluralité de fragments de façon à former une pluralité de microboutures qui sont ensuite immergées dans un bac contenant de l'eau de mer, puis un support de culture de forme allongée tel qu'un cordage est immergé dans le bac de manière à ce que les microboutures s'accrochent sur le support de culture, et enfin, le support de culture sur lequel sont accrochées les microboutures, est installé dans un champ de culture en mer à une profondeur prédéterminée et parallèlement à la surface de l'eau. Brève description des dessins Les buts, objets et caractéristiques de la présente invention ressortiront mieux à la lecture de la description qui suit, faite en référence aux dessins dans lesquels: la figure 1 est une représentation schématique d'un rameau à harpons de l'espèce d'algue Asparagopsis Armata dont certaines parties contiennent des composés organiques de silicium selon l'invention, la figure 2 représente schématiquement le bateau fixe sur lequel est installé le support de culture d'algues avant son installation dans un champ de culture en mer, la figure 3 représente schématiquement un rouleau utilisé pour faire passer le cordage servant de support de culture dans le procédé de culture selon l'invention, et la figure 4 représente schématiquement la goulotte portant la gaine enveloppant le cordage servant de support de culture dans le procédé de culture selon l'invention. Description détaillée de l'invention Les demandeurs ont trouvé que certaines parties d'algues macroscopiques contenaient des composés organiques de silicium biologiquement actifs de formule générale: R2 R1 -Si--R4 1 R3 dans laquelle R1, R2, R3 et R4 sont des radicaux organiques. Un au moins de ces radicaux est hydrolysable, du type -X-R', X étant un hétéroatome et R' étant H ou un radical organique. L'hétéro-atome est, de préférence, un atome d'oxygène. Une méthode de localisation originale décrite ci- dessous prouve que ces composés de silicium se trouvent principalement dans les organes reproducteurs et dans les tissus jeunes de certaines espèces d'algues. METHODE DE LOCALISATION Généralement, les algues contiennent du silicium, que ce soit sous forme inorganique, ou sous forme de composés organiques. Ainsi, la présence de la forme inorganique du silicium est bien connue dans les algues unicellulaires du type diatomée dans lesquelles la carapace silicifiée est constituée par un dépôt extracellulaire de silicium. Mais les demandeurs ont découvert que les composés organiques selon l'invention se trouvaient essentiellement à l'intérieur des cellules d'algues bien que des composés de silicium non appropriés dans le cadre de l'invention aient été localisés dans le ciment intercellulaire. Les composés organiques de silicium, les seuls intéressants dans le cadre de la présente invention, existent en quantité variable selon l'espèce d'algue, et ne se trouvent pas dans toutes les parties de l'algue. Ainsi, certaines espèces comme celles appartenant à la famille des algues rouges ou Rhodophycées semblent plus intéressantes que d'autres. Il a donc été nécessaire d'élaborer une méthode pour localiser les parties d'algue, et déterminer quelles espèces doit on sélectionner pour en extraire des composés organiques de silicium selon la méthode qui vient d'être décrite. Pour une variété d'algue donnée, une méthode de localisation préférée consiste à fixer des échantillons d'algues dans une résine, puis découper les échantillons fixés en coupes fines de façon à pouvoir effectuer une micro-analyse des tissus consistant en une spectrométrie aux rayons X suivie d'une analyse ionique. De façon à fixer des échantillons dans la résine, la première étape consiste à mettre les échantillons dans un fixateur usuel tel que du glutaraldéhyde ou un mélange formol-glutaraldéhyde en solution dans l'eau de mer et sous un léger vide correspondant à une pression inférieure à -3 bar. Les échantillons fixés peuvent être éventuellement postfixés par du tétraoxyde d'osmium. Au cours de la deuxième étape, les échantillons sont déshydratés dans une série de bains à degré alcoolique croissant en utilisant de l'eau de mer pour la solution alcoolique (plutôt que de l'eau pure) dans le but de maintenir une pression osmotique égale à la pression osmotique du milieu naturel des cellules. Une troisième étape consiste à mettre les échantillons dans une résine thermodurcissable liquide sous un léger vide pour que, lorsque le vide disparait, il y ait une meilleure pénétration de l'alcool et de la résine à l'intérieur des cellules. Ceci permet d'obtenir petit à petit la substitution de l'alcool par la résine dans les échantillons, la résine utilisée étant de préférence une résine époxyde. Enfin, au cours d'une dernière étape, on procède à la polymérisation de la résine, notamment par chauffage à 70*C. Les échantillons fixés sont alors découpés en coupes fines (0,7p) et semi-fines (2t) sur lesquelles on procède à la micro-analyse permettant de sélectionner précisément les parties d'algues contenant les composés organiques de silicium. La micro-analyse des échantillons fixés débute par une spectrométrie aux rayons X permettant la détection du silicium dans les échantillons en utilisant des coupes fines (0, 7L). Cette méthode permet d'identifier les éléments constitutifs du tissu biologique par leurs raies X caractéristiques. Pour ce faire, l'échantillon à analyser est déposé sur une grille de cuivre. L'échantillon est alors bombardé par un fin faisceau d'électrons d'une énergie comprise entre 0,1 et 50 Kev, appelé sonde électronique. Les spectres de rayonnement X émis par l'échantillon sont analysés par un spectromètre à sélection d'énergie. Les impulsions sont triées en fonction de leur énergie et un système expert interprète les résultats. Par cette méthode tous les éléments de numéro atomique supérieur à 4 sont détectés avec une limite de détection d'environ 10- 14 à 10-15 g, ce qui correspond à une teneur inférieure à 100 ppm. Si l'échantillon analysé comporte du silicium, on procède alors à une analyse ionique des ions secondaires permettant donc de visualiser les endroits de l'échantillon o se trouve le silicium. Pour cette analyse, dans la mesure o l'analyse ionique des électrons secondaires provoque l'érosion de la coupe, il est préférable d'utiliser des coupes semi-fines (2p) provenant d'échantillons qui ont été postfixés par du tétraoxyde d'osmium. L'analyse ionique des ions secondaires est une méthode de microanalyse combinant la spectrométrie de masse et la microscopie corpusculaire. Dans la spectrométrie de masse, les molécules subissent une réaction chimique de cassure permettant de les ioniser, les ions étant ensuite séparés en fonction du rapport de masse sur charge (m/z) dans un système d'analyse. le mécanisme de l'émission ionique secondaire s'obtient après bombardement de l'échantillon par un faisceau d'ions primaires (le potentiel du faisceau primaire est ajustable jusqu'à 12 kV environ). Les ions primaires percutent les atomes de l'échantillon et ceux qui se trouvent au voisinage de la surface. Ces atomes, arrachés à l'échantillon, quittent celui-ci soit sous forme neutre, soit sous forme chargée (positivement ou négativement). Ces particules chargées appelées ions secondaires sont utilisées pour l'analyse. Les ions secondaires peuvent être monoatomiques ou polyatomiques. L'optique corpusculaire à focalisation bidirectionnelle permet d'obtenir une image ionique secondaire filtrée de la surface de l'échantillon solide. La particularité de cette méthode est qu'elle permet à la fois d'identifier tous les éléments de la classification périodique et d'obtenir des images de la distribution avec une résolution spatiale inférieure au micromètre. Malheureusement, l'analyse par spectrométrie de masse amène des artefacts dûs au fait que le silicium peut être confondu avec un composé de même masse 28. Ce composé ne peut être que Al-H+ dans la mesure o les composés de même masse atomique, à savoir C2H4, N2, CO, CNH2, sont des constituants courants des composés biologiques et donnent donc une image diffuse sur l'ensemble de l'échantillon. Il faut donc également effectuer l'analyse ionique de l'aluminium (masse atomique 27) permettant de mettre en évidence les parties de l'échantillon contenant Al. Si le résultat obtenu est le même que celui obtenu lors de l'analyse du silicium, c'est donc qu'il s'agit du composé Al-H+ et non de silicium. L'échantillon est donc à rejeter. Par contre, s'il n'y a pas superposition des résultats, ceci signifie que la partie localisée lors de la micro- analyse contient véritablement du silicium. La méthode de localisation ci-dessus permet ainsi la localisation du silicium dans les différentes parties d'une espèce donnée d'algue, et la mise en oeuvre d'un procédé de culture dirigé vers la production de ces parties de l'algue les plus intéressantes. Ainsi, dans l'espèce d'algue Asparagopsis Armata de la classe des Rhodophycées, on a pu localiser de façon importante les composés de silicium dans le cystocarpe (organe de reproduction) et dans le tissu apical (tissu jeune), alors que la localisation du silicium est faible au niveau du thalle et des rameaux anciens. PROCEDE DE CULTURE Les composés organiques de silicium selon l'invention présentent donc un grand intérêt économique qui justifie la mise en place d'une culture intensive des espèces et variétés d'algues à partir desquelles on peut les extraire. C'est pourquoi la demanderesse a mis au point un procédé de culture originale décrit ci-dessous en référence aux figures 1 à 4. Bien que le procédé décrit ci-dessous peut s'appliquer à bon nombre d'espèces, il s'applique particulièrement bien à la famille des bonnemaisoniacées et spécialement à l'espèce Asparagopsis Armata. En effet, certaines algues telles que Asparagopsis Armata possèdent des rameaux à harpons. Ainsi, chaque plant de Asparagopsis Armata comporte de 5 à 10 rameaux à harpons tels que le rameau 10 avec ses harpons 12 illustré sur la figure 1. Dans la nature, sous l'action mécanique de la mer, ces rameaux se détachent, sont entrainés par les courants et se fixent sur de nouveaux supports, assurant ainsi la propagation et la pérennité de l'espèce. Le procédé de culture utilise dont le microbouturage qui consiste à couper chaque rameau à harpons qui comporte de 10 à 20 harpons en petits morceaux de 1 à 2 cm comportant chacun un ou plusieurs harpons pour obtenir dès le départ une multiplication de nombre de plants potentiels. Ainsi, en supposant qu'il n'y ait pas de fragments stériles (ce qu'on peut difficilement éviter), il est possible de multiplier la population initiale des plants par 50 à 200. Une caractéristique essentielle du procédé est de placer les microboutures sur un support que l'on place ensuite en mer. Pour ce faire on utilise un bateau fixe 20 représenté schématiquement sur la figure 2. Sur ce bateau se trouve un bac 22 rempli d'eau de mer contenant les microboutures d'Asparagopsis Armata à concurrence de 5 litres d'eau de mer pour un kg de microboutures. On fait passer dans ce bac un support 24 tel qu'un cordage ou un filet de faible largeur qui est tiré par un petit bateau mobile (non représenté) chargé d'installer le support 24 dans le champ de culture. Le cordage ou filet est de préférence pelucheux et non lisse pour que les microboutures se trouvant dans le bac 22 se fixent sur le support à son passage dans le bac. c'est pourquoi un cordage (ou filet) en polyéthylène usagé, donc pelucheux, est préférable à un cordage neuf. Le diamètre du cordage peut être de 25 à 50 mm de façon à offrir une surface importante capable de développer une population nombreuse de plants d'algues. La réserve 26 de cordage (ou filet) se trouve dans un bac de réserve 28. Le cordage (ou filet 24) subissant une force de traction du fait qu'il est tiré par une force extérieure, passe dans la bac 22 en se servant de 3 organes de guidage. Le premier organe de guidage 30 est un simple tube cylindrique en matière plastique lisse libre autour de son axe. Le deuxième organe de guidage 32 est un tube en matière plastique évidé et monté libre sur roulement étanche. Un tel tube illustré sur la figure 3, de préférence de forme hexagonale comprend des arêtes 34 qui offrent ainsi un contact limité avec le cordage 24. Ce contact limité est nécessaire pour ne pas enlever les microboutures accrochées au cordage, ce qui ne manquerait pas de se produire si le tube 32 était lisse. Le troisième organe de guidage 36 est également de forme similaire à celui représenté sur la figure 3 dans le même but d'éviter le décrochage des microboutures. Mais on peut prévoir que l'organe de guidage 36 soit entraîné en rotation (non pas libre), de façon à aider le cordage 24 à bien assurer le passage forcé du support de culture dans le bac 22. Il peut être du type "Power-block" à entraînement hydraulique dont la surface comprend des ergots destinés à limiter le contact avec le support de culture. On doit noter que le support de culture 24, cordage ou filet, doit être au préalable imbibé d'eau de mer afin qu'il n'y ait pas d'épuisement de l'eau de mer contenue dans le bac 22. Pour ce faire, une solution consiste à laisser baigner la réserve de cordage 26 dans de l'eau de mer remplissant le bac de réserve 28. Afin d'éviter que les boutures ne quittent le support lors de son immersion dans l'eau, il est nécessaire de déposer une gaine enveloppante autour du support de culture grâce au dispositif de sortie 40 représenté en détail sur la figure 4. Un tel dispositif peut consister en une gaine de filet en coton à mailles fines (1/10 mm) dont la réserve 42 entoure un manchon ou goulotte 44 en chlorure de polyvinyle aux extrémités incurvées. La gaine 46 est tirée de la même façon que le cordage 24 par un petit bateau mobile (non montré). Au fur et à mesure que l'on s'éloigne du manchon 44, la gaine 46 a tendance à se rapprocher du cordage et se retrouve rapidement en contact avec ce dernier par l'effet du resserrement des mailles dans le sens longitudinal. De façon à obtenir une bonne tension de la gaine 46 et donc une réduction de son diamètre pour une bonne adhérence au cordage 24, la goulotte 44 dispose à sa sortie d'un frein 48 sous la forme d'un anneau en caoutchouc. On doit noter que la gaine 46 dont le rôle est de maintenir les microboutures accrochées au support de culture, est en matière dégradable de manière à ce qu'elle se décompose lentement dans l'eau de mer en 10 à 20 jours, temps suffisant pour permettre la fixation des microboutures sur le support sans gêner pour autant leur début de croissance. Le support de culture ou cordage 24, enveloppé de sa gaine enveloppante est immergé enfin dans un champ de culture, à une profondeur optimale d'environ 1 mètre permettant une bonne pénétration de la lumière du jour. Les supports sont maintenus à cette profondeur parallèlement à la surface au moyen d'un jeu de flotteurs. Dans un champ de culture carré de 100 mètres de côté, les supports de culture sont groupés par 4 et leur écartement est obtenu par un jeu de barres plastiques (PVC) portant des flotteurs. Par conséquent, une telle installation permet d'accueillir 80 supports de culture de 50 m, soit 4 km de supports de culture pour un champ de 100 m sur 100 m. Bien que le mode de réalisation préféré du procédé de culture selon l'invention soit réalisé au moyen d'un support de culture tel qu'un cordage passant de façon continu dans un bac contenant des microboutures, il est possible d'utiliser des variantes sans sortir du cadre de l'invention. Ainsi, au lieu de se servir d'un cordage continu, on peut très bien utiliser des longueurs de cordages (10, 20 ou 50 m) que l'on immerge dans le bac contenant les microboutures avant de les installer dans un champ de culture. Comme on l'a vu précédemment, les composés organiques de silicium selon l'invention sont localisés principalement dans les organes jeunes de l'algue. En raison de ce fait d'une part, et de la capacité de l'algue à régénérer rapidement de nouveaux rameaux après une première coupe d'autre part, la conduite de la culture s'effectuera par récoltes successives espacées d'un mois afin de recueillir un maximum de jeunes rameaux riches en composés organiques de silicium. Cette méthode de récolte mensuelle des rameaux pourra être utilisée presque toute l'année. En outre, l'évolution naturelle des algues conduit à la formation annuelle des organes reproducteurs qui pourront être récoltés en juillet et aôut. METHODE D'EXTRACTION La méthode de localisation qui a été décrite précédemment permet la sélection des espèces d'algues présentant un intérêt pour l'extraction des composés organiques de silicium selon l'invention, mais également une extraction sélective des composés organiques du silicium dans les parties de l'algue les plus intéressantes pour cette extraction. Pour procéder à l'extraction des composés organiques de silicium, il est indispensable de faire éclater les parois cellulaires des algues. Deux méthodes peuvent être utilisées: le cryobroyage ou la méthode par ultra haute pression. Le cryobroyage consiste à effectuer une congélation préalable des algues en plaques de 5 à 6 kg. Ces plaques sont convoyées dans un broyeur au sein duquel est injecté de l'azote liquide, ce qui permet d'obtenir en sortie un produit à -50C. Ce produit est sous forme particulaire, très vacuolaire (les particules sont séparées par des espaces importants) et donc volumineux, le cryobroyage ayant entrainé un éclatement d'une proportion importante de cellules, et donc une libération du contenu intracellulaire. On doit noter que d'autres techniques peuvent être utilisées pour provoquer l'éclatement des cellules. Dans la méthode d'éclatement des cellules par ultra haute pression, les algues sont soumises pendant 6 à 30 mn à des pressions comprises entre 4.000 et 10.000 bars. Ainsi, chaque cellule de l'algue est soumise à une haute pression isostatique et omnidirectionnelle qui entraîne son éclatement. Une fois les parois cellulaires éclatées, il est indispensable de faire précipiter les épaississants de l'algue (par exemple les caraghénanes) par des agents du type ammonium ou par tout autre procédé. Bien que les composés organiques de silicium soient en partie stabilisés par des stabilisants naturels présents dans l'algue, il est préférable de compléter cette stabilisation en utilisant de préférence lesdits stabilisants naturels. Cette stabilisation est due à la création de liaisons faibles (ponts hydrogène) empêchant la polycondensation qui ne manquerait pas de se produire à cause des liaisons Si-OH. Les stabilisants utilisés peuvent être des composés hydroxyacides carboxyliques et particulièrement les alpha et les bêta hydroxyacides, les glucuronides, des aminoacides hydroxylés ou phénoliques, des composés possédant plusieurs fonctions alcools (ou phénols). On peut citer dans cette catégorie les glycols, les catéchols et les catécholamines, les polyols tel que le glycérol, les monosaccharides, ou encore des acides phénoliques tels que l'acide gallique. Après stabilisation, les concentrats de composés organiques de silicium sont enfin purifiés par ultra centrifugation, ou centrifugation à très grande vitesse et dialyse. Les dérivés de silicium autres que les composés organiques recherchés sont éliminés dans les culots de centrifugation. Dans le cas de l'espèce mentionnée ci- dessus, la solution obtenue par cette méthode d'extraction avait une teneur en silicium d'environ 0,3g/1. APPLICATIONS De façon générale, les composés extraits par la méthode ci-dessus pourront être utilisés dans de nombreuses applications mettant en jeu les propriétés des formes de silicium organique, à savoir les propriétés thérapeutiques, diététiques ou cosmétiques découlant de leur activité anti- inflammatoire, hydratante, régénératrice, anti- dégénérescente, normalisatrice, lipolytique, stimulatrice métabolique, anti-radicalaire et anti-glycation, et de façon générale l'activité de stimulation des défenses de l'organisme. Ainsi, les exemples donnés ci-après illustrent l'activité des composés organiques du silicium d'origine algale dans les domaines diététique (exemple 1) et cosmétique (exemples 2, 3 et 4). Exemple 1 (traitement diététique) On a procédé à la réalisation de gélules. Une gélule contient 0,59 g de composé organique de silicium d'origine algale extrait selon les principes de l'invention sous forme pulvérulente (on a fait adsorber l'extrait sur une poudre polyamide), ce qui conduit à 0,1 mg de silicium par gélule. L'administration a été de 6 à 9 gélules par jour. L'absorption journalière de silicium algal permet une remise en forme avec rééducation ou disparition des douleurs osseuses, le traitement devant se poursuivre plusieurs mois. Exemple 2 (activité régénératrice) On a procédé à une culture de fibroblastes humains dans des microplaques. Le composé organique de silicium d'origine algale est distribué dans un milieu MEM à raison de 8 ml par litre dosé en silicium, avec 2,5% de SVF, deux séries témoins étant réalisées avec 10% de SVF. La prolifération cellulaire est suivie par le test colorimétrique au rouge neutre (Borenfreund 1984). La valeur d'absorption du colorant étant directement proportionnelle au nombre de cellules vivantes, la présence de silicium organique algal augmente la prolifération de %. Exemple 3 (activité hydratante) On a réalisé un gel aqueux à 12% de composé organique de silicium d'origine algale obtenu selon l'invention. Ce gel a été appliqué sur l'avant-bras droit durant trois jours. L'effet hydratant a été mesuré par une méthode infrarouge (à transformée de Fourrier), le degré d'hydratation étant donné par le rapport des bandes amides C=O à 1650 cm-' aux bandes amides C-N à 1550 cm-'. On a mesuré ce degré d'hydratation quotidiennement, du 4ème au lOème jour, en comparaison avec un gel aqueux de référence appliqué sur l'avant-bras gauche. Le test a été fait sur 6 personnes. Les résultatsmoyens sont les suivants: - à J+l après application, on a un degré d'hydratation de 2,3 par rapport à un degré de 1,5 pour le témoin, - à J+7, ce même degré d'hydratation est de 2,09 par rapport à 1,37 pour le témoin. Ces résultats montrent bien l'effet immédiat, et surtout dans le temps, d'une activité hydratante biologique (eau liée) manifeste. Exemple 4 (activité lipolytique) On a maintenu en survie des adipocytes humains. On prend 10 microlitres de composé organique de silicium d'origine algale (soit 30 mg par litre en Si) dilués dans microlitres de solution à 0,01 M de NH4HCO3 complétés à 3 ml par un tampon de Krebs-Ringer. L'activité lipolytique est quantifiée par la libération de glycérol dosé par méthode enzymatique exprimée en nanomoles de glycérol par gramme de lipides totaux. Le composé de silicium algal à la dose étudiée stimule la lipolyse de base entre O et 60 minutes. La stimulation par rapport au témoin est de 134%. REVENDICATIONS 1..Composé organique de silicium biologiquement actif de formule générale R2 Ri-Si- R4 R3 dans laquelle R1, R2, R3 et R4 sont des radicaux organiques dont un au moins est hydrolysable, du type -X- R', X étant un hétéro-atome et R' étant H ou un radical organique quelconque; caractérisé en ce que ledit composé est un extrait d'origine algale provenant essentiellement des organes reproducteurs et des tissus jeunes. 2. Composé selon la revendication 1 dans lequel ledit hétéro-atome est l'atome d'oxygène. 3. Méthode de localisation des parties d'algues à partir desquelles peut être extrait le composé selon la revendication 1 ou 2, comprenant les étapes suivantes effectuées à partir d'un échantillon desdites parties d'algues: fixation dudit échantillon dans un bloc de résine polymérisée, découpe de coupes fines dans ledit bloc de résine polymérisé, et micro-analyse d'une desdites coupes par spectrométrie pour détecter les parties contenant du silicium selon une concentration supérieure à un seuil prédéterminé. 4. Méthode selon la revendication 3, dans laquelle ladite étape de fixation dudit échantillon d'algue dans un bloc de résine polymérisé comprend les étapes de: fixer ledit échantillon au moyen d'un fixateur tel que le glutaraldéhyde et sous un léger vide. déshydrater ledit échantillon fixé dans une série de bain à degré alcoolique croissant, mettre ledit échantillon hydraté dans une résine non polymérisée pour que ladite résine remplace petit à petit l'alcool dans ledit échantillon, et procéder à la polymérisation de la résine. 5. Méthode selon la revendication 3 ou 4, dans laquelle ladite étape de micro-analyse consiste à: détecter si l'échantillon analysé comporte du silicium par spectrométrie aux rayons X, effectuer une analyse ionique des ions secondaires pour visualiser les portions de l'échantillon o se trouve le silicium, et éliminer lesdites portions de l'échantillon lorsque celles-ci sont les mêmes que celles obtenues par analyse ionique de l'aluminium contenu dans l'échantillon. 6. Procédé de culture d'algues à partir desquelles est extrait le composé organique de silicium selon la revendication 1 ou 2, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes: un plant d'algue dont on veut réaliser la culture est coupé en une pluralité de fragments de façon à former une pluralité de microboutures, lesdites microboutures sont immergées dans un bac (22) contenant de l'eau de mer, un support de culture de forme allongée (24) tel qu'un cordage est immergé dans ledit bac de manière à ce que lesdites microboutures s'accrochent sur ledit support de culture, et ledit support de culture sur lequel sont accrochées lesdites microboutures, est installé dans un champ de culture en mer à une profondeur prédéterminée et parallèlement à la surface de l'eau. 7. Procédé de culture selon la revendication 6, dans lequel ledit bac (22) contenant lesdites microboutures est un bateau fixe (20) et ledit support de culture est un cordage continu (24) tiré par un bateau mobile et forcé à être immergé dans ledit bac au fur et à mesure qu'il est entraîné à ce que lesdites microboutures s'accrochent audit cordage. 8. Procédé de culture selon la revendication 6, dans lequel ledit cordage (24) est pelucheux de façon à permettre un bon accrochage desdites microboutures sur ledit cordage. 9. Procédé de culture selon l'une des revendications 6, 7 ou 8, dans lequel ledit support de culture (24) est enveloppé d'une gaine enveloppante (38) biodégradable avant d'être installé dans ledit champ de culture. 10. Procédé de culture selon l'une quelconque des revendications 6 à 9, dans lequel ledit plant d'algue est choisi parmi les algues comportant des rameaux à harpons (10), chacune desdites microboutures comportant au moins un harpon (12) permettant un accrochage aisé sur ledit support de culture (24). 11. Procédé de culture selon la revendication 9, dans lequel ladite algue comportant des rameaux à harpons (10) est de l'espèce Asparagopsis Armata. 12. Méthode d'extraction de composés organiques de silicium selon la revendication 1 ou 2 consistant à: provoquer l'éclatement des cellules des parties d'algues contenant lesdits composés, éliminer les épaississants de l'algue par précipitation avec des agents du type amonium, stabiliser dans lesdits composés organiques de silicium, les liaisons Si-OH naturelles ou obtenues par hydrolyse des liaisons Si-OR', et purifier les concentrats résultant de la stabilisation par ultra-centrifugation. 13. Méthode d'extraction selon la revendication 12, dans laquelle l'éclatement des cellules des parties d'algues contenant lesdits composés organiques de silicium, se fait par cryobroyage à environ -50C. 14. Méthode d'extraction selon la revendication 12, dans laquelle l'éclatement des cellules des parties d'algues contenant lesdits composés organiques de silicium, se fait par ultra haute pression entre 4000 et 10000 bars. 15. Application du composé organique de silicium selon la revendication 1 ou 2, pour obtenir une composition thérapeutique, diététique ou cosmétique ayant une activité anti-inflammatoire, régénératrice, anti-dégénérescente, normalisatrice, lipolytique, stimulatrice métabolique, anti-radicalaire ou anti-glycation, ou de façon générale une activité de stimulation des défenses de l'organisme humain ou animal.