Brevet FR2726006A1 — publié le 19960426

SEQUENCES NUCLEOTIDIQUES CODANT DES ANTIGENES D'UN RETROVIRUS DU TYPE VIH-1 GROUPE O L'invention concerne les antigènes obtenus par expression de séquences nucléotidiques ou par synthèse chimique par exemple en utilisant des synthétiseurs de marque Applied Biosystems, présents dans les variants d'HIV-l groupe O et particulièrement les antigènes correspondant à ceux isolables des particules virales. A titre d'exemple de virus HIV-1 du groupe O, on se réfère à I'isolat HlV-1(vAu > Rappelons que la désignation HIV utilisée dans ce texte correspondant à la désignation VIH également utilisée. L'invention concerne également les anticorps, polyclonaux ou monoclonaux, induits par ces antigènes L'invention est également relative à des séquences d'ADN clonées soit présentant une analogie de séquence, soit une complémentarité avec l'ARN génomique du virus précité Elle concerne aussi des procédés de préparation de ces séquences d'ADN clonées. L'invention concerne également les polypeptides contenant des séquences d'acides aminés codés par les séquences d'ADN clonées. De plus, I'invention concerne des applications des antigènes mentionnés précédemment au diagnostic in vitro chez l'homme de potentialité de certaines formes du SIDA et, en ce qui concerne certains d'entre eux, à la production de compositions immunogènes et de compositions vaccinantes contre ce rétrovirus. De même, I'invention concerne les applications aux mêmes fins des susdits anticorps et, pour certains d'entre eux, leur application à la production de principes actifs de médicaments contre ce sida humain. L'invention concerne également l'application des séquences d'ADN clonées et de polypeptides obtenus à partir de ces séquences comme sondes ou amorces pour l'amplification génétique, dans des trousses de diagnostics. L'invention est également relative à des compositions d'antigènes qui peuvent être obtenus par synthèse chimique ou par expression dans un hôte cellulaire recombinant permettant le diagnostic d'une infection due à un rétrovirus humain de type HIV indépendamment du sous-type HIV-1 ou HIV-2. De telles compositions comprennent au moins un peptide choisi parmi les peptides antigéniques communs aux virus HIV-1, HIV-2 et HIV-1(vAu) ou des variants de ces peptides antigéniques possédant des caractéristiques immunogènes semblables. L'invention vise également des compositions permettant le diagnostic spécifique d'une infection due à un rétrovirus humain de type HIV-1, plus particulièrement le HIV-1, groupe M.le HIV-2 ou le HIV-1 groupe O et comprenant au moins un peptide antigénique spécifique du virus HIV-1, un peptide antigénique spécifique du virus HIV-2 et un peptide antigénique spécifique du virus HIV-1 groupe O ou des variants de ces peptides antigéniques possédant des caractéristiques immunogènes semblables. Plus particulièrement, les peptides antigéniques sont dérivés de la protéine d'enveloppe des virus HIV-1 groupe M, HIV-2 et HIV-1 groupe O. Etat de la technique Deux types de virus de l'immunodéficience humaine (HIV) ayant une responsabilité dans le développement d'un SLA ou du SIDA ont été isolés et caractérisés. Un premier virus dénommé LAV-1 ou HIV-1 a été isolé et décrit dans la demande de brevet GB 8324.800 et la demande EP 84401.834 du 14/09/1984. Ce virus a également été décrit par F. Barré-Sinoussi et al dans Science (1983), 220, 868-871. Le rétrovirus HIV de type 2 appartient à une classe distincte et n'a qu'une parenté immunologique réduite avec des rétrovirus HIV de type 1. Les rétrovirus HIV-2 ont été décrits dans la demande de brevet européen n" 87.400.151.4 publiée sous le numéro 239.425. Le rétrovirus HIV-1 est le plus courant et sa présence est prédominante dans plusieurs régions du monde. Quant au rétrovirus HIV2, il est le plus souvent retrouvé en Afrique de l'Ouest, bien que sa propagation à l'extérieur de cette région ait été récemment documentée par Grez et al, (1994) J. Virol. 68, 2161-2168. L'ensemble des lentivirus de l'immunodéficience des primates, comprenant les virus du type 1 et du type 2 de l'immunodéficience humaine ainsi que plusieurs types de virus de primates non humains, augmente en taille et en complexité. Le plus courant de ces virus, le HIV-1, se répand actuellement sous forme d'épidémie mondiale et il est responsable d'un problème de santé public majeur. Peu après l'identification et la caractérisation moléculaire de ce virus, il a été reconnu comme étant très variable, et comprend actuellement plusieurs sous-types (Myers, 1994, Louwagie, et al. 1993, Louwagie, et al. 1992, Myers, G. (1994) HIV-1 subtypes and phylogenetics trees. In: Human Retrovirus and AIDS 1994; Myers, G., Korber, B., Wain-Hobson, S., Smith, R.F. and Pavlakis, G.N., eds. Los Alamos National Laboratory, Los Alamos, NM. 111-2 - 111-9.).Cette distinction de sous-type est surtout basée sur la divergence des gènes gag et env. Au moins 6 sous-types ont été identifiés, désignés A à F, mais plusieurs sont encore susceptibles d'émerger de l'enquête mondiale poussée en cours sur les isolats du HIV-1. II a été trouvé que ces différents sous-types sont équidistants les uns des autres, dans un profil phylogénétique dit phylogénie en étoile, ce qui suggère que les différents sous-types du HIV-1 auraient évolué et divergé de façon synchrone à partir d'un ancêtre commun. Récemment, deux virus distincts de ce groupe de virus HIV1 ont été isolés et caractérisés. Ces deux virus ont été obtenus de patients vivant au Cameroun, en Afrique de l'Ouest Centrale (Gürtler, et al. 1994, Vanden Heasevelde, et al. 1994). Leur séquence, plus particulièrement la séquence de leur gène env (enveloppe), montre clairement que ces virus appartenaient à une catégorie distincte de virus apparentés au HIV-1, initialement désignée HIV-1 groupe O (NKENGASONG et al., 1993). Toutefois, la diversité des isolats à l'intérieur de ce groupe de virus apparentés au HIV-1 n'est pas connue, et sa propagation en dehors de l'Afrique n'a pas été documentée. Description de l'invention Dans le contexte de la présente invention, les inventeurs ont isolé et séquencé le gène env d'un troisième isolat du groupe O, le HIV 1(VAu), obtenu d'une patiente française qui n'a jamais voyagé en dehors de l'Europe et qui est morte du SIDA en 1992. Selon sa séquence d'enveloppe, le HIV-1 (VAU) est apparenté aux deux virus camerounais HAVANT70 et HIVMVP5,80 récemment caractérisés. L'analyse phylogénétique des séquences env révèle que les trois virus semblent constituer un groupe distinct, qui sera appelé ici HIV-1 groupe O. L'isolement du HIV 1(VAU) de cette patiente indique également qu'une certaine propagation des HIV-1 du groupe O s'est déjà produite en dehors de l'Afrique. Isolement du virus HIV-1NAU) HIV-1(VAU) a été isolé en 1992 d'une patiente française âgée de 41 ans atteinte du SIDA. Cette patiente présentait en 1986 une leuconeutropénie sévère associée à un carcinome du col utérin. Néanmoins, elle a progressivement montré des signes d'infections opportunistes, avec une baisse du nombre de cellules T CD4+ circulantes et elle est morte du SIDA en 1992. Des anticorps anti-HIV-1 ont d'abord été détectés par ELISA (Elavia, SANOFI DIAGNOSTICS PASTEUR et Abbott) en 1990. La patiente n'avait jamais voyagé en dehors de l'Europe, n'avait pas utilisé de médicaments par voie intraveineuse et n'avait subi aucune transfusion sanguine connue. Aucun partenaire sexuel originaire de l'Afrique n'a été identifié. Elle a donné naissance à un enfant en bonne santé en 1971, mais un fils, né en 1980, est mort à l'âge d'un an suite à un épisode clinique très suggestif de SIDA néo-natal. Son troisième enfant né en 1983 et son mari sont actuellement en bonne santé et non infectés. L'isolement du virus a été réalisé de la manière suivante les cellules CD8+ présentes dans les PBMC (lymphocytes sanguins périphériques) de la patiente ont été éliminées à l'aide de billes revêtues d'lOT8 (Immunotech). Ces PBMC restantes ont été stimulées à la PHA, puis cocultivées avec des PBMC épuisées en CD8 provenant d'un donneur sain et stimulées à la PHA. La croissance virale dans la coculture a été suivie par dosage de l'activité transcriptase inverse (RT) du surnageant et par test ELISA de la p24 du HIV-1 (coffret de diagnostic commercialisé par Du Pont de Nemours). Le virus obtenu de la coculture initiale a été soumis à plusieurs passages dans des cultures de PBMC épuisées en CD8 et stimulées à la PHA.Plusieurs tentatives ont été réalisées pour infecter par le HIV-1 (VAU) diverses lignées cellulaires transformées, dont des cellules MT4 (Harada, et al. 1985) et CEM (Rey, et al. 1989), ainsi que la lignée P4-2 de cellules Hela-CD4-LTRLacZ (Clavel et Charneau 1994). Caractérisation biologique de HIV-1(VAU) Deux semaines après la coculture des PBMC de la patiente épuisées en CD8, stimulées à la PHA, avec des cellules similaires d'un donneur sain, la production de virus a été détectée sous forme d'un pic d'activité RT dans le surnageant de culture. Ce virus pouvait alors être soumis à des passages en série sur des PBMC normales, épuisées en CD8, stimulées à la PHA. Sur la figure 1, le panneau A représente la production du HIV-1 (VAU) dans des surnageants de cultures de PBMC infectées, contrôlées par dosage RT (cercles pleins) et ELISA de capture d'antigène p24 HIV-1 (cercles vides). La concentration de p24 HIV-1 est exprimée en ng/ml et l'activité RT en cpm/,l. Dans le panneau B, la même expérience a été effectuée avec un isolat primaire standard du HIV-1 d'un patient atteint du SIDA. Bien que la croissance du HlV-l(NIAu) ait été facilement détectée à l'aide du dosage RT, la détection de virus dans les surnageants de culture à l'aide de l'ELISA p24 HIV-1 (DuPont) était nettement moins sensible. La figure 1 montre la comparaison entre les profils d'infection productive des PBMC avec soit le HIV-1(VAU) soit un isolat primaire du HIV-1 d'un patient atteint du SIDA, dosés en RT ou p24. Pour des quantités équivalentes de particules, déterminées par dosage de l'activité RT dans les surnageants dosés, approximativement 25 fois moins de p24 a été détecté pour le HIV-1(VAU) que pour l'autre isolat HIV-1. La différence peut être consécutive au fait que l'anticorps monoclonal spécifique de la p24 du HIV-1, qui est utilisé pour revêtir les plaques ELISA, n'a qu'une faible affinité pour les produits gag du HIV 1(VAU) Plusieurs tentatives négatives ont été faites pour propager le HIV-1(VAU) sur des lignées de cellules T humaines transformées, sensibles au HIV-1. En particulier, des cocultures entre des PBMC infectées par le HIV-1(VAU) et soit des cellules MT4 soit des cellules CEM n'ont pas conduit à la propagation du virus. II a également été trouvé que ce virus n'était pas capable d'infecter des cellules HeLa CD4 (P4-2) (Clavel et Charneau 1994) portant un gène lacZ inductible par le gène tat.De même, aucune réplication du HIV-1",AU, ne pouvait être détectée dans des lymphocytes sanguins périphériques activés de plusieurs chimpanzés. L'analyse de la séquence d'enveloppe HIV-1"AU,, qui sera décrite en détail plus loin, et sa comparaison avec celle des deux isolats camerounais récemment décrits Indique que tous les trois virus appartiennent au même groupe de virus apparentés au HIV-1. De plus, cette comparaison indique que ces trois variantes du virus sont approximativement phylogénétiquement équidistantes les unes des autres. Par conséquent, chacune des trois variantes de virus constitue en soi un sous-type, distinct, de leur groupe, qui est maintenant appelé HIV-1 groupe O. Ce groupe est distinct du groupe des autres isolats HIV-1, identifiés jusqu'ici, que les inventeurs appellent ici HIV-1, groupe M. L'apparition de ce nouveau groupe pose la question de son origine : est-ce que le groupe O a évolué à partir des virus du groupe M (ou inversement) ou est-ce que chaque groupe a un passé distinct ? Les inventeurs pensent que dans la mesure où à la fois le groupe M et le groupe O présentent un profil de divergence interne similaire, il est vraisemblable qu'ils correspondent chacun à la diversification d'ancêtres distincts de virus dans des populations humaines distinctes. On ne peut pas apprécier à partir des données phylogénétiques et virologiques actuellement disponibles si l'ancêtre de l'un ou l'autre des deux groupes affectait les humains de manière naturelle ou a été introduit chez les humains à partir d'autres espèces.Le seul virus proche du HIV-1 présent chez un primate non humain est l'isolat SIVCPZGAB (Huet, et al. 1990), isolé à partir d'un chimpanzé apparemment infecté de façon naturelle, qui est clairement distinct à la fois du groupe M et du groupe O, et pour lequel aucun équivalent humain n'a été trouvé. Il est peu probable que les virus du groupe O aient récemment évolué à partir d'un virus de chimpanzé dans la mesure où le HIV-1CVAU n'a pas réussi à se répliquer dans des lymphocytes de chimpanzés. Pourquoi l'épidémie du groupe O n'apparaît-elle que maintenant, quelques 15 à 20 ans plus tard que le groupe M ? II y a trois explications possibles : premièrement, I'introduction de l'ancêtre des virus du groupe O chez les humains se serait produite plus récemment que celle du groupe M; deuxièmement, il se pourrait qu'on ait permis au groupe M de se propager plus tôt que le groupe O en raison de différentes conditions sociales dans leur région d'origine: et troisièmement, les virus du groupe O auraient une capacité de transmission plus réduite, comparée à celle des virus du groupe M. II a été proposé qu'une telle propriété explique l'absence de propagation mondiale significative du HIV-2, pour lequel une charge virale plus faible chez les sujets infectés est liée à une transmissibilité réduite (De Cock, et al. 1993).A cet égard, bien que nous n'ayons aucune donnée sur la charge virale chez les patients infectés par un HIV-1 du groupe O, le pouvoir pathogène de ces virus ne semble pas être différent de celui du HIV-1. La patiente chez qui le HIV 1(VAU) a été isolé est morte du SIDA, comme le patient chez qui l'isolat HlVMvp5l8o du groupe O a été obtenu. Toutefois, l'histoire naturelle de l'infection de la patiente HIV 1(VAU) n'est toujours pas claire, mais il existe plusieurs indications que cette patiente a été infectée avant 1980, comme le suggère la mort à cette date de son deuxième enfant atteint d'un syndrome ressemblant au SIDA. L'invention concerne tout variant des séquences d'acide nucléique du virus HIV 1(VAU) ou de tout virus équivalent du groupe O, contenant des protéines de structure qui présentent les mêmes propriétés immunologiques que les protéines de structure codées par le gène env comprenant la séquence décrite à la figure 6 et dénommée vau , désignée encore par la SEQ ID N" 5. La présente invention est également relative à des compositions contenant soit des antigènes selon l'invention, soit un mélange d'antigènes selon l'invention associés à des extraits originaires d'un ou plusieurs HIV-1 groupe O ou d'autres virus variants, d'une part,et d'un ou plusieurs HIV-2 et/ou HIV-1 d'autre part, ces compositions étant éventuellement marquées. On peut utiliser tous types de marqueur approprié: enzymatiques, fluorescents, radioactifs, etc. Acides nucléiques L'invention concerne les ADN ou fragments d'ADN, plus particulièrement ADN et fragments d'ADN clonés obtenus à partir de l'ARN, d'ADNc ou d'amorces utilisables en PCR, dérivés de 'ARN ou de l'ADN du rétrovirus HIV-1 (VAU) L'invention concerne encore particulièrement tous les ADN équivalents, notamment tout ADN présentant des homologies de séquence avec l'ADN du HIV-1NAU), en particulier avec la séquence codant la région env de la souche HIV-1(VAU) comprenant la séquence correspondant à la SEQ ID N" 5 représentée à la figure 6 et appelée vau . L'homologie avec le HIV-1 groupe M est au moins égale à 50%, de préférence à 70% et plus avantageusement encore à environ 90%.D'une façon générale, I'invention concerne tout ADN (ou ARN) équivalent capable de s'hybrider avec l'ADN ou l'ARN d'un rétrovirus HIV-1 du groupe O. L'invention concerne aussi les séquences d'ARN correspondant aux séquences d' ADN définies ci-dessus. L'invention concerne également le gène de l'intêgrase du virus HIV-1 ,vAu,.comprenant la séquence identifiée par la désignation SEQ ID N 7 ou s'hybridant avec la SEQ ID N" 7. L'invention vise aussi les ARN correspondant à l'ADN ci-dessus décrit. L'invention a aussi pour objet des compositions contenant les peptides ou polypeptides codés par la susdite ADN ou fragments d'ADN. Des oligonucléotides dérivés de la séquence VAU ou encore du gène de l'intégrase du virus HIV-1 (VAU) particulièrement des oligonucléotides comprenant au moins 9 nucléotides peuvent être utilisés pour la détection de séquences ADN ou ARN de virus HIV-1 du groupe O dans des prélèvements biologiques. des cultures cellulaires, ou des extraits de cellules, par la technique de la PCR ou toute autre technique d'amplification génique. Ces séquences pourraient être utilisées soit comme amorces soit comme sondes en vue de la détection spécifique des produits d'amplification génique. Sont utilisables également comme sonde d'hybridation, les produits d'amplification, ou leur séquence correspondante synthétique, obtenus par synthèse chimique (Applied Biosystems). L'invention couvre également tout fragment d'au moins 100 nucléotides utilisable comme sonde dans des réactions d'hybridation et capable de permettre une réaction avec une partie du génome d'un variant HIV-1(VAU) dans des conditions d'hybridation de forte stringence. Clonage et séquençage du gène env HIV(VAU) Pour l'amplification initiale par PCR de l'ADN du HIV-1(VAU), 'ADN total a été extrait de PBMC infectées par le HIV-1(VAU) et et un segment du gène pol (région intégrase) a été amplifié à l'aide d'amorces dégénérées amorce 4506 5'AGTGGAT(A/T)(T/C)ATAGAAGCAGAAGT3'; Seq. ID N 1; amorce 5011 : 5'ACTGC(C/T)CCTTC(A/C/T)CCTTTCCA3'. Seq. ID N 2; Le milieu de réaction incluant KCI 50 mM. Tris-HCI 10 mM (pH 8,9), MgCl2 1,5 mM, gélatine 0,1 mg/ml. dNTP 0,2 mM, Taq Polymérase 1U (Amersham). La PCR a été effectuée pendant 43 cycles thermiques à 92 C pendant 10 secondes. 50 C pendant 1 minute, 72 C pendant 40 secondes. Le produit d'amplification résultant a été cloné dans un vecteur pBluescript, engendrant le clone ph4 déposé à la CNCM le 20 octobre 1994 sous le n 1-1 486 qui a ultérieurement été utilisé comme sonde pour cribler une banque lambda d'ADN de faible poids moléculaire, digéré par EcoRI, issu de cellules infectées par le HIV-1(VAU) Brièvement, les PBMC infectées par le HIV-1(VAU) ont été cocultivées avec des PBMC neuves stimulées à la PHA et épuisées en cellules CD8+, pendant 24 heures, après quoi un effet cytopathogène poussé (ECP) était visible. L'ADN de faible poids moléculaire a alors été extrait suivant la méthode de Hirt (Hirt 1967), et digéré avec l'enzyme EcoRI. Une analyse en Southern-blot précédente de cet ADN avait bien montré que le génome HIV 1(VAU) contenait un seul site EcoRI, permettant le clonage d'espèces d'ADN circulaire non intégré représentant la totalité du génome viral. Le produit de digestion résultant a été soumis à une électrophorèse sur gel d'agarose, et la population de fragments d'ADN d'une taille de 8-12 kb approximativement a été purifiée et ligaturée à de l'ADN lambda Zap digéré par EcoRI (Stratagene). Après l'encapsidation, I'étalement et le criblage par hybridation avec de l'ADN ph4 marqué au 32p, un clone, X H34, a été identifié comme étant positif, et amplifié.L'inserat EcoRI a été purifié, soniqué, et cloné par "shotgun" dans le vecteur M13mp18 traité à la phosphatase, digéré avec l'enzyme Smal. Cent cinquante des clones obtenus ont été séquencés sur un séquenceur d'ADN 373A (Applied Biosystems), et les séquences résultantes ont été rassemblées en une seule séquence à l'aide du progiciel d'analyse d'ADN GCG-Wisconsin. L'analyse de cette séquence a révélé de nombreux codons non-sens dans tous les cadres de lecture, ce qui est très suggestif d'un génome hypermuté (Vartanian, et al. 1991). Cette séquence étant inutilisable, il a par conséquent été décidé d'amplifier par la PCR le gène env du HIV 1(VAU) à l'aide de l'ADN total de PBMC infectées par le HIV 1(VAU). et des amorces oligonucléotidiques dérivées de la séquence #H34 : amorce TH2 5'GCTCTAGATGGGGATCTCCCATGGCAGG3' Seq. ID N 3; amorce U H2 5' GCTCTAGATCAGGGAAGAATC C CTGAGTGT3'. Seq. ID N 4. L'amplification par le PCR a été effectuée pendant 35 cycles thermiques à 92 C pendant 15 secondes, 52 C pendant 1 minute, 60 C pendant 2 minutes et 72 C pendant 2 minutes. Le produit d'amplification résultant, d'une taille de 3,5 kb, a été cloné dans le vecteur M13mp18 et séquencé en des réactions successives, en utilisant d'abord l'amorce universelle de séquençage M13, puis des amorces déduites des séquences amont. L'analyse des séquences nucléotidiques et peptidiques a été effectuée à l'aide du progiciel d'analyse d'ADN GCG-Wisconsin. Le gène env HIV-1(VAU) code 877 acides aminés au total. incluant le peptide signal. La séquence nucléotidique du gène env HIV-1(VAU) correspond à la Seq. ID N 5 (voir figure 3). Utilisation d'acides nucléiques à titre de sondes L'invention concerne naturellement aussi l'utilisation des ADN, ADNc ou de leurs fragments, ou de plasmides recombinants ou autre vecteur équivalent contenant ces fragments, en tant que sondes, pour la détection de la présence ou non du virus HIV-1(VAU) dans des échantillons de sérum ou autres liquides ou tissus biologiques obtenus à partir de patients suspectés d'être porteurs du virus HIV-1 (VAU) Ces sondes sont éventuellement marquées (marqueurs radioactifs, enzymatiques, fluorescents, etc.).Des sondes particulièrement intéressantes pour la mise en oeuvre du procédé de détection du virus HlV-1Au) ou d'un variant HlV-1(N,Au) peuvent être caractérisées en ce qu'elles comprennent la totalité ou une fraction de l'ADN complémentaire du génome du virus HIV-1 (VAU) ou encore notamment les fragments contenus dans divers clones. On mentionnera plus particulièrement une fraction de l'ADNç du HIV-1 (VAU) contenant toutou partie de la région env. Les sondes mises en oeuvre dans ce procédé de détection du virus HIV-1(VAU) ou dans des trousses de diagnostic, ne sont en aucune façon limitées aux sondes décrites précédemment. Elles comprennent toutes les séquences nucléotidiques issues du génome du virus HIV 1(VAU,, d'un variant HIV-1(VAU) ou d'un virus proche par sa structure, dès lors qu'elles permettent la détection, à partir de fluides biologiques de personnes susceptibles de présenter un sida, d'un virus HIV-1 du groupe O, en particulier HIV-1(VAU) par hybridation avec de l'ADN ou de l'ARN du virus HIV-1 (VAU). Particulièrement avantageuses sont les sondes qui, lorsqu'hybridées avec HIV, donnent une réaction forte avec les HIV appartenant au groupe O et une réaction faible avec les HIV appartenant au groupe M. A titre d'exemple non limitatif, une sonde fabriquée à partir de la séquence du gène de l'intégrase du virus HIV-1 (VAU) (SEQ ID N 7) donne, lorsqu'hybridée avec HIV dans des conditions d'hybridation telles que celles décrites dans le brevet EP 178 978, une réaction forte avec les HIV du groupe O et une réaction faible avec les HIV du groupe M. La détection peut être réalisée de toute façon en soi connue, notamment: par une mise en contact de ces sondes soit avec les acides nucléiques obtenus à partir de cellules contenues dans des fluides biologiques (par exemple liquide céphalo-rachidien, salive, etc.), soit avec ces fluides eux-mêmes, dès lors que leurs acides nucléiques ont été rendus accessibles à l'hybridation avec ces sondes et ce dans des conditions permettant l'hybridation entre ces sondes et ces acides nucléiques et par une détection de l'hybridation éventuellement produite. Le susdit diagnostic mettant en jeu des réactions d'hybridation peut également être réalisé à l'aide de mélanges de sondes respectivement dérivées du HIV-1 (VAU). du HIV-1 et du HIV-2, dès lors qu'il n'est pas nécessaire de faire la distinction entre les types de virus HIV recherchés. L'invention a aussi pour objet des vecteurs d'expression contenant la séquence codant pour les protéines d'enveloppe de HIV-1 ou contenant la séquence codant pour l'intégrase. L'invention comprend des compositions pour la détection de la présence ou non de virus HIV-1VAU dans des échantillons de sérum ou d'autres liquides ou tissus biologiques, obtenus à partir de patients suspectés d'être porteurs du virus HlV-îvAu- Ces compositions sont caractérisées en ce qu'elles comprennent au moins une sonde obtenue à partir d'une séquence nucléotidique issue ou dérivée du génome du virus HIV 1VAU, particulièrement un fragment d'ADN HIV-1VAU contenant la région ou une partie de la région codant la protéine env du virus HlV-lvAu ou d'un variant de HlV-îvAu Avantageusement, la composition décrite ci-dessus comprend également une sonde obtenue à partir d'une séquence nucléotidique issue de HIV-1 ou de HIV-2. D'autres compositions pour le diagnostic comprennent les amorces de l'invention utilisables pour l'amplification génique de rétrovirus de groupe O ou variants de ces rétrovirus. Antigènes, notamment protéines et glycoprotéines L'invention concerne une protéine d'enveloppe externe du rétrovirus HIV-1 VAU codée par le gène comprenant la séquence correspondant à la SEQ ID N" 5. Selon un mode de réalisation préféré de l'invention, cette protéine est en outre caractérisée en ce qu'elle comprend la séquence d'acides aminés correspondant à la Seq ID N" 6 représentée sur la figure 3 et comportant les résidus d'acides aminés 1 à 526. L'invention a aussi pour objet tout polypeptide ou variant, dérivé de ladite séquence, ayant un épitope susceptible d'être reconnu par des anticorps induits par le virus HlV-lvAu. La susdite protéine peut être obtenue sous forme glycosylée ou non glycosylée. L'invention a aussi pour objet une protéine transmembranaire d'enveloppe comprenant l'enchaînement d'acides aminés SEQ ID N" 8 représenté sur la figure 3 entre les résidus d'acides aminés 527 et 877. Cette protéine transmembranaire est, dans le cadre de l'invention, sous forme glycosylée ou non. L'invention concerne tous les antigènes, notamment protéines, glycoprotéines. polypeptides ou peptides obtenus par expression de séquences codantes du génome HIV 1(VAU, et ayant des propriétés immunologiques équivalentes à ceux ou celles du HIV 1(VAU) Les antigènes sont dits équivalents dans le cadre de la présente invention, dès lors qu'ils sont reconnaissables par les mêmes anticorps, notamment des anticorps isolables à partir de sérum obtenu d'un patient ayant été infecté par un HlV-1Au). En particulier, I'invention a pour objet les peptides ou polypeptides synthétisés chimiquement et dont la séquence d'acides aminés est contenue dans celle des protéines d'enveloppe HIV-1 (VAU), représentée sur la figure 3, ou les peptides ou polypeptides équivalents. On doit aussi inclure, parmi les peptides, polypeptides, protéines ou glycoprotéines équivalents, les fragments des antigènes qui précèdent et les peptides préparés par synthèse chimique ou par génie génétique, dès lors qu'ils donnent lieu à des réactions immunologiques croisées avec les antigènes dont ils sont dérivés. En d'autres termes, I'invention concerne tout peptide ou polypeptide ayant des épitopes identiques ou semblables aux épitopes des susdits antigènes, susceptibles d'être reconnus par les mêmes anticorps. Font partie de ce dernier type de polypeptides, les produits d'expression de séquences d'ADN correspondant aux séquences des ADN codant les polypeptides ou antigènes susdits. Plus particulièrement, les antigènes obtenus à partir du virus HIV-1 (VAU) ou produits par génie génétique ou synthèse chimique classique et qui présentent le plus grand intérêt dans le contexte de la présente invention sont les antigènes qui permettent d'établir une distinction claire entre les virus HIV 1(VAU, de l'invention et les virus des groupes HIV-1 et HIV-2. A cet égard des différences considérables ont été observées au niveau de la protéine d'enveloppe du virus HIV-1 (VAU) ainsi qu'au niveau de l'épitope immunodominant de la portion externe de la protéine PM. II semble que les protéines gag et pol présentent davantage de similitude avec le virus HIV-1 que la protéine d'enveloppe. L'invention concerne aussi des peptides ou polypeptides identiques à la région immunodominante de la glycoprotéine transmembranaire d'enveloppe du HIV-1 (VAU) Cette région est représentée à la figure 3. Des polypeptides préférés de cette région sont par exemple ceux qui contiennent la séquence CKNRLIC ou correspondent à cette séquence. Il peut s'agir aussi de polypeptides ou peptides répondant à la séquence RLLALETFIQNWWLLNLWGCKNRLIC ou comprenant cette séquence. Un autre peptide préféré identifié ci-après par la dénomination peptide VAU , répond à la séquence suivante ou comprend cette séquence ou toute partie de cette séquence susceptible d'être reconnue par des anticorps dirigés contre le rétrovirus HIV 1(VAU) RARLLALETFIQNQQLLNLWGCKNRLICYTSVKWNKT. Des polypeptides variants de cette séquence sont par exemple les polypeptides représentés sur la figure 4 pour les Isolats HIV1(MVP5180) et HlV-1(ant7o,. Ces polypeptides peuvent aussi être dérivés des précédents par insertion et/ou délétion et/ou substitution, par exemple substitution par des résidus d'acides aminés conservatifs. Synthèse du peptide VAU Le peptide VAU a été préparé par la technique classique de synthèse peptidique en phase solide par la méthode Fmoc en flow continu . Le peptide a été préparé à l'aide d'un synthétiseur Milligen 9050 PEP en utilisant la résine Millipore PEG PAL, substituée par le premier résidu d'acide aminé C-terminal. Les chaines latérales des acides aminés sont protégées par les groupes suivants Pmc pour l'arginine, Trt pour l'asparagine, la glutamine et la cystéine , Boc pour la lysine , tBu ester pour l'acide glutamique , tBu éther pour la sérine, la thréonine et la tyrosine. Les groupements temporaires Fmoc sont éliminés par une solution de pipéridine à 20% dans le DMF. Les réactions de couplage de chaque acide aminé sont réalisées avec 6 équivalents de DIPCDI et d'HOBT.Certains résidus nécessitent un double couplage notamment les arginines 1 et 23, les cystéines 19 et 26, l'asparagine 11, les glutamines 10,12 et 13, l'alanine 4 I'isoleucine 9, les leucines 2, 3,14 et 15. Après couplage, la résine est séchée sous vide. Le peptide est clivé du support par le réactif K pendant 4 heures à température ambiante. Le brut est précipité et lavé à l'éther éthylique. Le produit est purifié par chromathographie haute pression (HPLC) sur un instrument WATERS LC PREP 4000 avec des cartouches WATERS Delta Pak C18 40x100mm, débit 30 ml/mn, gradient acétonitrile/TFA 0,1%. Les fractions contenant le peptide sont rassemblées, concentréds à l'évaporateur rotatif puis lyophilisées. Cyclisation Le peptide (0,025mM) est dissous dans une solution d'acétate d'ammonium 10mM. Le pH est amené à 8,5 avec une solution d'ammoniaque 1 M. Le pH est réajusté après 3 ou 4 heures. La cyclisation est suivie par HPLC à 214 nm et 280 nm. colonne WATERS Delta Pak C18 5p, gradient acétonitrile/TFA 0,1%. La cyclisation est terminée au bout de 15 heures. Le pH est amené à 6 à l'aide d'acide acétique 97100%, la solution est lyophilisée puis purifiée dans les mêmes conditions que pour le peptide brut. Le peptide est contrôlé par HPLC et par spectrométrie de masse selon la technique d'électrospray (spectrophotomètre FISON VG Trio 2000). Fmoc: Fluoroenyl-9 methyloxycarbonyl Pmc: Pentanemethyl-8 chroma ne sulfonyl-6 Trt: Tritryl Boc: Tertbutyloxycarbonyl tBU : tert butyl DMF: Dimethylformamide DIPCDI: Diisopropyl carbodiimide HOBT: Hydroxy-1 benzotriazole TFA: acide trifluoroacétique Réactif K: Phénol/Eau/Thioanisole/Ethanedithiol/TFA: 2,Sml/2,5ml/2,5ml/1 5ml/41 ml Comparaison de la séquence d'acides aminés de l'enveloppe HIV-1,VAU, avec la séquence correspondante d'autres virus HIV. L'analyse en Western-blot d'une série d'échantillons sériques provenant d'une patiente infectée par le HIV-1(VAU) est présentée sur la figure 2. Des bandelettes de nitrocellulose, portant des protéines séparées par électrophorèse et provenant de particules de HIV purifiées (SANOFI DIAGNOSTICS PASTEUR), ont été mises à incuber avec des échantillons de sérum et leur réactivité a été évaluée selon les protocoles recommandés par le fabricant. Les résultats obtenus sont les suivants: Bandelette 1 protéines spécifiques de HIV-2, qu'on a fait réagir avec un échantillon de sérum de la patiente HIV-1NAU, obtenu en février 1992. Bandelettes 2-7 sérums positifs HIV-1 , sérums de la patiente HIV-1CVAU): 2: obtenu en novembre 1990; 3 en décembre 1990; 4 en février 1991; 5 en février 1992; 6 témoin négatif; 7 témoin positif (sérum d'un individu infecté par le HIV-1). Les noms et la taille des protéines (en kD) sont indiqués dans la marge. La figure 3 montre un alignement de la séquence d'acides aminés de l'enveloppe de HIV-1(VAU) avec la séquence correspondante de isolat de référence HlV-llai (Wain-Hobson, et al. 1985). Les peptides signal, la boucle V3 et l'épitope immunodominant gp41 sont mis en relief par des rectangles hachurés. Le site de clivage entre la glycoprotéine d'enveloppe externe gp120 et la gp41 transmembranaire est indiqué par des flèches. Les lignes verticales entre les lettres d'acides aminés indiquent une identité complète, les deux-points (:) indiquent une forte homologie, et les points (.) indiquent une homologie limitée entre des acides aminés individuels. L'alignement a été effectué en utilisant le programme GAP du progiciel GCG-Wisconsin. La version originale (1.0) des programmes GAP et BESTFIT a été écrite par Paul Haeberli à partir d'une étude détaillée des publications de Needleman et Vunsch (J. Mol. biol. 48, 443-453 (1970) et de Smith et Waterman (Adv. Appl. Math. 2; 482-489 (1981). Les alignements limités ont été mis au point par Paul Haeberli et ajoutés au progiciel pour constituer la version 3.0. Ils ont ensuite été fusionnés en un seul programme par Philip Marquess pour constituer la version 4.0. Les pénalités d'absence d'écart dans l'alignement des protéines ont été modifiées tel que suggéré par Rechid, Vingron et Argos (CABIOS 5 . 107 113(1989). L'alignement de la figure 3 révèle de nombreuses zones de divergences poussées, avec quelques domaines conservés çà et là. Ces régions conservées correspondent grossièrement aux domaines qui sont également conservés dans les isolats HIV-1 classiques (Alizon, et al. 1986, Benn, et al. 1985). Parmi les domaines divergents, la boucle V3, appelée également déterminant principal de neutralisation (Javaherian, et al. 1990, Javaherian, et al. 1989, Matsushita, et al. 1988) est clairement l'un des plus divergents, bien que les deux cystéines définissant la boucle soient conservées. La séquence de la coiffe de la boucle, GPGRAF pour le HlV-llai, est GPMAWY chez le HIV 1(VAU) Ce motif de la coiffe est identique à celui de l'isolat du groupe O camerounais HIVANT70 (Vanden Heasevelde, et al. 1994), mais est différent de celui de l'autre isolat du groupe O, HIVMVP5180 (Gürtler, et al. 1994), pour lequel le motif est GPMRWR. Dans l'ensemble de l'enveloppe, 29 sites de N-glycosylation potentiels ont été identifiés au total, dont 13 sont conservés comparativement à d'autres protéines d'enveloppe HIV-1. On a également trouvé 19 cystéines conservées au total, ce qui indique que l'architecture globale de repliement de la protéine est conservée, mais on a trouvé 5 cystéines non conservées. La figure 4 montre l'alignement multiple des peptides immunodominants dans le segment extracellulaire de la glycoprotéine d'enveloppe transmembranaire de différents isolats H IV-1. Toutes les séquences sont comparées à la séquence de référence HIV-1LAI. Des traits d'union indiquent une identité au HIV-1LAI. L'alignement a été effectué à l'aide du programme PILEUP du progiciel GCG-Wisconsin. Dans le programme PILEVP, la stratégie de rassemblement représentée par le dendrogramme est nommée UPGMA, qui signifie en anglais Unweighted pair-group method using arithmetic averages (Smith, P.H.A. Sokal, R.R. (1973) dans Numerical Taxonomy (p.p. 230234), W.H. Freeman and Company, San Francisco, California, USA). Chaque alignement en pair de PILEVP utilise la méthode de Needleman et Wunsch (Journal of Molecular Biology 48; 443-453 (1970)). Comme le montre la figure 4, la séquence d'acides aminés de 'épitope immunodominant de la portion extérieure de la protéine TM (Gnann, et al. 1987) est sensiblement différente de celle d'autres isolats HIV-1 et HIV-2. Toutefois elle a gardé la plupart des acides aminés qui se sont révélés conservés entre les virus HIV-1 et HIV-2. On a trouvé que certains acides aminés particuliers n'étaient conservés qu'entre les virus du groupe O tel est le cas de la lysine en position 21 sur un peptide de 26 acides aminés, de la thréonine en position 7 et de l'asparagine en position 11. Ces différences pourraient expliquer l'absence de détection d'antigènes d'enveloppe HIV-1 classiques par un des sérums de la patiente HIV-1(VAU) et également probablement par celui de patients infectés par d'autres virus de groupe O. Globalement, la comparaison entre les séquences d'enveloppe HIV 11ai et HIV-1(VAU) a montré une identité de 50 %. La séquence d'enveloppe HIV 1(VAU) a également été comparée à celle d'autres représentants HIV dont les deux membres du sous-type O du HIV-1 décrits et séquencés HIV-1ANT70 et HIV-1MVP5180 et SIV.Les résultats de cette analyse, présentés sur le Tableau 1, établissent que le HIV-1(VAU) appartient au sous-type O. L'enveloppe HIV 1(VAU) est identique à 70 % à l'enveloppe HIV-1ANT70 et identique à 71 % à HlV-1MVp5,80. Parmi les sous-types HIV-1 les plus courants, I'identité au niveau de l'enveloppe est comparable, allant de 74 % à 80 %. HIV-1EU 77 HIV-1MAL 76 80 HIV-1U455 75 74 76 SIVCPZGAB 61 62 63 63 HIV-2ROD 38 39 39 40 39 SIVMAC251 37 37 38 38 38 74 SIVAGMTYO 37 36 37 38 40 46 47 HIVANT 70 51 52 52 52 53 33 32 33 HIVMVP5180 51 52 54 51 52 36 33 34 70 HIVVAU 50 51 52 51 54 35 34 35 70 71 HIV-1LAI HIV-1EU HIV-1MAL HIV-1U455 SIVCPZGAB HIV-2ROD SIVMAC251 SIVAGMTYO HIVANT 70 HIVMVP5180 La relation entre le H IV-1 (VAU), d'autres membres de la phylogénie des HIV-1 et les deux virus récemment décrits du sous-type O a été analysée par construction d'un arbre phylogénétique de parcimonie non pondérée à l'aide de la séquence nucléotidique de la région transmembranaire env. Le résultat de cette analyse est représenté sur la fig. 5 dans laquelle les nombres indiquent le nombre de changements nucléotidiques. La figure 5 montre que le HIV-1 (VAU) est à peu près équidistant des deux autres virus du sous-type O, et que, globalement, ces trois virus semblent être approximativement équidistants les uns des autres.En effet, le nombre de changements nucléotidiques entre le HIV-1MVP5180 et le HIV 1(VAU) est de 218 dans le segment de génome analysé, alors que la distance est de 183 entre le HIV-1MVP5180 et le HIV 1ANT7O, et de 213 entre le HIV 1ANT70 et le HlV-1(vAu). Ce profil de divergence est très similaire à ce qu'on trouve dans l'ensemble des autres sous-types HIV-1, où le nombre de changements nucléotidiques uniques que l'on trouve entre deux sous-types distincts va de 157 (sous-type E au sous-type F) à 219 (sous-type A au sous-type D). Le tableau 1 montre la comparaison des séquences d'enveloppe de différents virus apparentés au HIV-1. Les nombres indiquent le pourcentage d'identité en acides aminés entre des séquences d'enveloppe tels qu'ils ont été calculés, tels qu'ils ont été calculés à l'aide du programme GAP du progiciel GCG-Wisconsin. pour HIVANT70, seule la protéine d'enveloppe externe a été utilisée dans la comparaison. Compositions comprenant des antigènes HlV-1(vAu) De façon générale, I'invention concerne toute composition utilisable en détection In vitro de la présence dans un fluide biologique, notamment de personnes ayant été mises au contact du HIV 1(VAU), ou d'anticorps contre l'un au moins des antigènes HIV-1 (VAU) Cette composition peut être appliquée au diagnostic sélectif de l'infection par un HIV-1 du groupe O, en mettant en oeuvre les techniques de diagnostic telles qu'elles sont décrites dans les demandes de brevet EP 84401.834 et EP 87400.151.4.Dans le contexte de la présente invention, on utilise tout constituant comprenant des déterminants antigéniques capables d'être reconnus par des anticoprs produits contre le H IV-"VAU,, par exemple des antigènes ou peptides recombinants ou peptides synthétisés chimiquement définis à partir de la séquence de l'enveloppe HIV-1NAU) A cet égard, I'invention concerne plus particulièrement des compositions contenant l'une au moins des protéines d'enveloppe du virus HIV 1(VAU) On mentionnera, à titre d'exemples de compositions, celles qui contiennent des protéines, glycoprotéines ou peptides de la protéine d'enveloppe correspondant à l'ensemble de la région 590-620 de la protéine gp41 du HIV 1(VAU) ou aux parties de cette région spécifiques du HIV-1(VAU) tels que les peptides -TFIQN- ou -WGCKNR-. L'invention concerne également des compositions associant des protéines et/ou glycoprotéines et/ou peptides HIV-1(VAU). recombinants ou synthétiques, avec des protéines et/ou glycoprotéines et/ou peptides HIV-1 et/ou HIV-2 et/ou d'un autre HIV-1 groupe O obtenus par extraction ou dans des lysats ou par recombinaison ou par synthèse chimique et/ou de peptides dérivés de ces protéines ou glycoprotéines et susceptibles d'être reconnus par des anticorps Induits par le virus HIV-1 et/ou HIV-2 et/ou HIV-1, groupe O. Les compositions diagnostiques contenant des déterminants antigéniques capables d'être reconnus par des anticorps dirigés contre le HIV-1 (VAU), en particulier les compositions peptidiques, peuvent être incluses dans ou associées à des compositions ou des trousses déjà disponibles pour la détection de l'infection par des rétrovirus HIV-1 et/ou HIV-2, de façon à étendre le spectre de détection des trousses à la détection des rétrovirus HIV-1 du groupe O. A titre d'exemples non limitatifs - soit des protéines du noyau (core), particulièrement les protéines gag, pol, HIV-1 et HIV-2 ou des peptides de celles-ci, et des protéines ou peptides d'enveloppe HlV-1AU), - soit des glycoprotéines d'enveloppe HIV-1, des glycoprotéines d'enveloppe HIV-2 et des glycoprotéines d'enveloppe HIV1 (VAU), - soit des mélanges de protéines et/ou glycoprotéines HIV-1, de protéines et/ou glycoprotéines HIV-2 et de protéines et/ou glycoprotéines d'enveloppe HIV-1(VAU). II est important de noter que, bien que les anticorps de patients infectés par des virus HIV-1, groupe O réagissent fortement avec des antigènes gag et pol de virus HIV-1 groupe M, leur réactivité est pratiquement nulle avec des antigènes d'enveloppe de virus du groupe M. II est donc important que la composition de la présente invention comprenne au moins une protéine ou un peptide d'enveloppe HIV 1(VAU) de façon à ce que ce virus puisse être détecté avec certitude. De telles compositions, utilisées en diagnostic, aident par conséquent au diagnostic du sida ou des symptômes qui lui sont associés, qui s'étendent sur un plus large spectre des agents étiologiques responsables. II va sans dire que l'utilisation de compositions de diagnostic qui ne contiennent que des protéines et/ou glycoprotéines d'enveloppe HlV-1(vAu) n'en restent pas moins utiles pour la détection plus sélective de la catégorie de rétrovirus qui peut être tenue pour responsable de la maladie. Procédés et trousses de diagnostic d'infections causées notamment par le virus HIV-1(VAU) La présente invention concerne un procédé de diagnostic in vitro de l'infection par les HIV, agents étiologiques du SIDA et de syndromes apparentés, qui comprend la mise en contact d'un sérum ou d'un autre milieu biologique, provenant d'un patient ou sujet faisant l'objet du diagnostic, avec une composition contenant l'un(e) au moins des protéines, glycoprotéines ou peptides HIV-1 (VAU), et la détection d'une réaction immunologique éventuelle. Des exemples de telles compositions ont été décrits plus haut. Des méthodes préférées mettent en jeu, par exemple, des réactions immunoenzymatiques de type ELISA ou d'immunofluorescence. Les titrages peuvent être des mesures par immunofluoresence directe ou indirecte ou des dosages immunoenzymatiques directs ou indirects. De tels titrages comprennent par exemple - le dépôt de quantités déterminées de l'extrait ou des compositions antigéniques visées conformes à la présente invention dans les puits d'une microplaque de titrage - l'introduction dans ces puits d'un sérum dilué ou non dilué, ou de dilutions croissantes du sérum, contenant essentiellement les anticorps dont la présence doit être détectée in vitro. - l'incubation de la microplaque, - le lavage soigneux de la microplaque avec un tampon approprié, - I'introduction dans les puits de la microplaque d'anticorps marqués spécifiques anti-immunoglobuline humaine le marquage étant réalisé par une enzyme choisie parmi celles qui sont capables d'hydrolyser un substrat de telle sorte que ce dernier subit alors une modification de son absorption des radiations, au moins dans une bande de longueur d'onde déterminée, et - la détection, de préférence de façon comparative par rapport à un témoin, de l'importance de l'hydrolyse du substrat en tant que mesure des risques potentiels ou de la présence effective de l'infection. La présente invention est également relative à des nécessaires ou trousses de diagnostic de l'infection par le virus HIV-1(VAU), lesquels comprennent - un extrait, une fraction plus purifiée, ou un antigène synthétique dérivé des types de virus indiqués ci-dessus, cet extrait fraction ou antigène marqué, par exemple, de façon radioactive, enzymatique, fluorescente ou autre, - des antiimmunoglobulines humaines ou une protéine A (fixée de façon avantageuse sur un support insoluble dans l'eau) telles que des billes d'agarose) ou des puits de microplaque, etc.), - éventuellement un échantillon de fluide biologique ou cellules obtenu à partir d'une personne en bonne santé - des tampons et, le cas échéant. des substrats pour la visualisation du marquage. L'invention a aussi pour objet des compositions immunogènes capables d'induire des anticorps reconnaissant des antigènes pouvant être obtenus par synthèse chimique ou par recombinaison. Sérologie La capacité des anticorps sériques de la patiente infectée par le HIV-1,VAU, à réagir avec des préparations antigéniques HIV-1 a été évalué à l'aide de diverses trousses disponibles dans le commerce GENELAVIA MIXT (SANOFI DIAGNOSTICS PASTEUR), Abbott, Wellcome, et Behring. La réactivité de ces anticorps avec différentes protéines HIV-1 a été examinée à l'aide de la trousse de Western-blot deSANOFI DIAGNOSTICS PASTEUR suivant les protocoles recommandés par le fabricant. Plus précisément, le sérum de la patiente a été examiné plusieurs fois à l'aide de trousses ELISA spécifiques HIV-1. II a d'abord été testé et s'est avéré être positif en 1990, étant noté 7,33 (ce chiffre correspond au rapport entre la Do mesurée et la Do du bruit de fond) avec la trousse de SANOFI DIAGNOSTICS PASTEUR, 3,50 avec la trousse Abbott et 2,70 avec la trousse Wellcome. En utilisant des réactifs spécifiques à la fois du HIV-1 et du HIV-2, le sérum a été noté 1,42 avec la trousse Behring et 4,40 avec la trousse Wellcome. La capacité du sérum de la patiente à réagir à différentes dates avec différentes protéines de structure HIV-1 à l'aide du dosage par immunoempreinte LAV BLOT HIV-1, test commercialisé par SANOFI DIAGNOSTICS PASTEUR. Comme le montre la figure 5, avec tous les échantillons de sérum testés, on n'a remarqué qu'une très faible réactivité du sérum avec les protéines env HIV-1 gp160 et gp120. Toutefois, le sérum a réagi fortement avec les protéines gag de HIV-1 p55 (précurseur de gag) et p24 (CA), et avec les produits pol p66 (RT) et p34 (IN). En immunoempreinte HlV-2, on n'a détecté qu'une très faible réactivité avec la p26 gag. Ceci illustre que la détection d'anticorps spécifiques du groupe O avec des trousses de diagnostic sérique disponibles dans le commerce doit être soigneusement contrôlée. Bien que des anticorps sériques de patients infectés par des virus du groupe O présentent de fortes réactions croisées avec les antigènes gag et pol du groupe M, ils présentent peu ou pas de réactions avec les antigènes d'enveloppe de groupe M. On peut, par conséquent, supposer qu'une proportion significative de ces patients pourrait ne pas être détectée en utilisant certaines trousses à base de réactifs antigéniques d'enveloppe du groupe M. En effet, dans une étude préliminaire récente de plusieurs sérums de patients infectés par le groupe O. il a été trouvé que la capacité de détecter des anticorps spécifiques du groupe O était très différente selon la trousse de détection utilisée (Loussert-Ajaka, I., Ly, T.D., Chaix, M.L., Ingrand, D., Saragosti, S., Courroucé, A.M., Brun-Vézinet, F. and simon, F. (1994). HIV-1/HIV-2 seronegativity in HIV-1 subtype O infected patients. Lancet. 343, 1393-1394.). Ceci implique qu'une étude soignée et poussée de la réactivité d'un grand nombre de sérums du groupe O avec toutes les trouisses de diagnostic disponibles sur la marché est nécessaire. Compositions comprenant des anticorps polyclonaux ou monoclonaux préparés à partir des antigènes recombinants ou synthétiques du virus H IV-1 VAU). L'invention concerne un sérum susceptible d'être produit chez l'animal par inoculation à celui-ci du HIV-1(VAU), particulièrement les épitopes antigéniques du HIV-1(VAU) et plus particulièrement les épitopes antigéniques de la protéine d'enveloppe du virus HIV-1NAU). L'invention concerne plus particulièrement les anticorps polyclonaux plus spécifiquement orientés contre chacun des antigènes, notamment protéines ou glycoprotéines du virus. Elle concerne aussi des anticorps monoclonaux produits par différentes techniques, ces anticorps monoclonaux étant orientés respectivement plus spécifiquement contre les différentes protéines du HIV-1 (VAU), particulièrement les protéines d'enveloppe du HIV-1 (VAU) Ces anticorps polyclonaux ou monoclonaux sont utilisables dans différentes applications.On mentionnera essentiellement leur utilisation pour neutraliser les protéines correspondantes, voire inhiber l'infectivité du virus entier. Ils peuvent également être utilisés par exemple pour mettre en évidence les antigènes viraux dans les préparations biologiques ou pour réaliser des opérations de purification des protéines et/ou glycoprotéines correspondantes, par exemple lors de l'utilisation dans des colonnes de chromatographie d'affinité. A titre d'exemple, des anticorps anti-enveloppe ou des anticorps anti-gag sont des réactifs utilisables en diagnostic, en particulier pour la détection de particules HIV-1 groupe O par ELISA de capture d'antigène. L'invention concerne des anticorps dirigés contre un ou des antigènes du virus HlV-1AU) produits à partir de séquences d'acides aminés du HlV-1(vAu). Des techniques d'obtention d'anticorps à partir d'épitopes antigéniques semblables aux épitopes antigéniques du virus HIV-1O/AU) de la présente invention ont été décrites précédemment. La technique de préparation d'anticorps décrite dans la publication de ULMER et al., 1993 peut être utilisée par l'homme du métier pour préparer les anticorps de la présente invention, les modifications permettant d'adapter cette technique aux antigènes de la présente invention faisant partie des connaissances de l'homme du métier. De ce qui précède, il résulte que l'invention concerne la détection du virus HIV 1(VAU) ou d'un variant grâce à la mise en oeuvre des anticorps décrits précédemment dans un procédé faisant appel à différentes étapes, ces étapes étant spécifiquement prévues pour faire apparaître les propriétés caractéristiques du virus HlV-1(N/Au). D'une façon générale, le procédé de détection du virus HIV 1(VAU) ou d'un variant dans des échantillons de sérum ou d'autres liquides biologiques ou tissus, obtenus à partir de patients suspectés d'être porteurs du virus HIV-1Nn,, comprend les étapes suivantes - la fabrication d'au moins une sonde éventuellement marquée;; - au moins une étape d'hybridation conduite dans des conditions permettant l'hybridation par mise en contact de l'acide nucléique de l'échantillon du patient suspect avec ladite sonde marquée et immobilisation du complexe formé sur un support solide approprié, - le lavage dudit support solide avec une solution de lavage adéquate, - la détection dudit complexe et donc de la présence ou non du virus HIV 1(VAU) par méthode appropriée d'immunodétection, ou autre, connue de l'homme du métier. Dans un autre mode de réalisation préféré du procédé selon l'invention, I'hybridation précitée est conduite dans des conditions non stringentes et le lavage de la membrane est réalisé dans des conditions adaptées à celles de l'hybridation. En utilisant une sérologie ou une technique d'amplification génique telle que la Polymerase Chain Reaction (PCR)spécifique, I'importance de l'épidémie HIV-1 du groupe O a été évaluée précisément. II a été trouvé que 5 à 10 % de patients infectés par un HIV-1 au Cameroun sont en réalité infectés par des virus du groupe O. Toutefois, à part l'isolat de virus décrit ici, la propagation de virus du groupe O en dehors de l'Afrique de l'Ouest Centrale n'a pas été documentée. La patiente chez qui le HIV-1(VAU) a été isolé a toujours vécu en France et n'a jamais voyagé en Afrique. Jusqu'ici, nous n'avons aucune preuve précise concernant l'origine de son infection, mais ce cas Indique qu'une certaine propagation des virus du groupe O en Europe s'est déjà produite. REFERENCES Agut, H., Candotti, D., Rabanel, B.. Huraux, J.. Remy, G., Ingrand, D., Tabary, T., Chippaux, C., Chamaret, S. Guétard, D. Dauguet, C. et Montagnier, L. (1992). Isolation of atypical HlV-1-related retrovirus from AIDS patient (L'isolement de rétrovirus atypique apparenté au HIV-1 de patient atteint du SIDA). Lancet. 340, 681-682. Alizon, M., Wain-Hobson S.. Montagnier, L. et Sonigo, P. (1986). Genetic variability of the AIDS virus nucleotide sequence analysis of two isolates from African patients (Variabilité génétique du virus du SIDA analyse de la séquence nucléotidique de deux isolats de patients africains). Cell. 46, 63-74. Barré-Sinoussi, F., Chermann, J.C., Rey, F., Nugeyre, M. 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Séquence nucléotidique, plus particulièrement ADN et fragments d'ADN clonés pouvant être obtenus à partir de l'ARN, de cADN ou d'amorces utilisables pour l'amplification génique, dérivés de l'ARN ou de l'ADN du rétrovirus HIV-1 groupe O, ladite séquence nucléotidique étant caractérisée en ce qu'elle comprend la séquence correspondant à Seq ID N 5 ainsi que toute portion de cette séquence ou variant de cette portion susceptible d'hybrider avec l'ADN ou l'ARN correspondant du virus HIV-1 groupe O. 2. Séquence nucléotidique selon la revendication 1, caractérisée en ce qu'il s'agit d'ADN ou de fragments d'ADN obtenus à partir de l'ARN, de cADN ou d'amorces pour l'amplification génique, dérivés de 'ARN ou de 'ADN du rétrovirus HIV-1 (VAU). la séquence comprenant l'enchaînement correspondant à Seq ID N 5 ainsi que toute portion de cette séquence ou variant de cette portion susceptible d'hybrider avec l'ADN ou l'ARN correspondant du virus HlV-i 3. Séquence nucléotidique selon la revendication 1 ou la revendication 2, caractérisée en ce que ladite séquence est choisie parmi le groupe de séquences correspondant à Seq ID N 1, Seq ID N 2, Seq ID N 3 et Seq ID N 4. 4. Séquence nucléotidique caractérisée en ce qu'elle comprend l'enchaînement de nucléotides correspondant à SEQ ID N 7 et en ce qu'elle code pour l'intégrase d'un rétrovirus HIV-1 groupe O, en particulier d'un rétrovirus HIV 1(VAU) ou séquence nucléotidique hybridant avec la séquence contenant l'enchaînement SEQ ID N 7. 5. Oligonucléotide comprenant au moins 9 nucléotides, tel qu'obtenu à partir d'une séquence nucléotidique selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, susceptible d'être utilisée comme amorce pour l'amplification génique d'un rétrovirus HIV-1 groupe O. 6. Séquence de nucléotides utilisable comme sonde, caractérisée en ce qu'elle hybride dans des conditions d'hybridation de forte stringence avec l'ADN produit par amplification génique au moyen d'amorces selon la revendication 5. 7. Composition pour la détection de la présence ou non d'un rétrovirus HIV-1 groupe O, notamment le rétrovirus HIV-1 (VAU) dans des échantillons de sérum ou d'autres liquides ou tissu biologique obtenu à partir de patients suspectés d'être porteurs d'un rétrovirus HlV-i groupe O, ladite composition étant caractérisée en ce qu'elle comprend au moins une sonde obtenue à partir d'une séquence nucléotidique issue du génome du virus HIV-1 (VAU), particulièrement un fragment de l'ADN de HIV-1(VAU) contenant la région ou une partie de la région env du virus HIV 1(VAU) d'un variant de HIV-1 (VAU) tel que défini à l'une quelconque des revendications 1 à 5. 8. Composition selon la revendication 7, caractérisée en ce que ladite composition comprend également une sonde obtenue à partir d'une séquence nucléotidique issue de HIV-1 n'appartenant pas au groupe O et/ou de HIV-2. 9. Composition pour la détection de la présence ou non d'un rétrovirus HIV-1 groupe O, notamment le rétrovirus HIV-1 (VAU) dans un échantillon biologique, ladite composition étant caractérisée en ce qu'elle comprend au moins deux séquences nucléotidiques selon l'une quelconque des revendications 1 à 5,, issues du génome du virus HlV-i(vAu), utilisables en tant qu'amorces pour l'amplification notamment par PCR de l'ADN et/ou de l'ARN de rétrovirus HIV-1 du groupe O et en particulier de HIV-1 (VAU) 10. Séquence nucléotidique caractérisée en ce qu'il s'agit d'une séquence d'ARN correspondant à une séquence d'ADN selon l'une quelconque des revendications 1 à 7. 11. Protéine d'enveloppe du rétrovirus HIV-1 (VAU), caractérisée en ce qu'elle peut être obtenue par l'expression dans un hôte cellulaire d'une séquence nucléotidique selon la revendication 1, et en ce que ladite protéine comprend la séquence d'acides aminés comprise entre les résidus 1 et 526 de Seq ID N" 6 ainsi que tout peptide, polypeptide, glycoprotéine ou variant dérivé de ladite séquence ayant un épitope susceptible d'être reconnu par des anticorps induits par le virus HIV-1 ("AU). 12. Protéine d'enveloppe du rétrovirus HIV-1 (VAU), caractérisée en ce qu'elle peut être obtenue par l'expression dans un hôte cellulaire d'une séquence nucléotidique selon la revendication 1, et en ce que ladite protéine comprend la séquence d'acides aminés comprise entre les résidus 527 à 877 de Seq ID N 7 ainsi que tout peptide, polypeptide, glycoprotéine ou variant dérivé de ladite séquence ayant un épitope susceptible d'être reconnu par des anticorps induits par le virus HIV-1 (VAU) 13.Polypeptide ou peptide selon la revendication 11 ou 12, caractérisé en ce qu'il comprend la séquence CKNRLIC ou en particulier la séquence RLLALETFIQNWWLLNLWGCKNRLIC ou un variant de cette séquence tel que la séquence RLWALETLIQNQQRLNLWGCKGKLIC, la séquence RLLALETLLONQQLLSLWGCKGKLVC ou la séquence RARLLALETFIQNQQLLNLWGCKNRLICYTSVKWNKT. 14. Peptide synthétique caractérisé en ce qu'il s'agit d'un fragment d'une protéine selon l'une des revendications 11 ou 12, en ce qu'il est issu de la séquence SEQ ID N 6 ou de la séquence SEQ ID N 7 et en ce qu'il est reconnu par des anticorps induits contre un rétrovirus HIV-1(VAU) ou variant de ce fragment capable d'être reconnu par des anticorps induits par un rétrovirus HIV 1(VAU) 15. Composition pour la détection in vitro de la présence dans un échantillon biologique humain d'anticorps anti-HIV- 1 (vAu), ladite composition comprenant au moins un antigène comprenant une protéine, une glycoprotéine, un polypeptide ou un peptide de la protéine d'enveloppe d'un rétrovirus HIV-1 (VAU) tel que défini dans l'une quelconque des revendications il à 14. 16. Composition selon la revendication 15, caractérisée en ce qu'elle comprend en outre un antigène tel qu'une protéine, une glycoprotéine, un polypeptide ou un peptide d'un virus HIV-1 n'appartenant pas au groupe O et/ou d'un virus HIV-2 ou un peptide dérivé d'un virus HIV-1 n'appartenant pas au groupe O et/ou d'un virus HIV-2 ayant un épitope susceptible d'être reconnu par les anticorps induits par le virus HIV-1 n'appartenant pas au groupe O et/ou le virus HIV-2. 17. Composition selon la revendication 16, caractérisée en ce que les protéines et/ou glycoprotéines de HIV-1 n'appartenant pas au groupe O et/ou de HIV-2 sont des protéines gag, pol ou des peptides de celles-ci. 18. Composition selon la revendication 16, caractérisée en ce que les protéines et/ou glycoprotéines de HIV-1 n'appartenant pas au groupe O et/ou de HIV-2 sont des glycoprotéines d'enveloppe. 19. Composition selon l'une quelconque des revendications 15 à 18, caractérisée en ce que ladite composition comprend une séquence peptidique correspondant à l'ensemble de la région 590-620 de la protéine gp41 de HIV 1(VAU) ou une partie de cette région spécifique à HlV-ivAU). 20. Composition selon la revendication 19, caractérisée en ce que ladite séquence peptidique est la séquence -TFIQN-, CKNRLIC ou WGCKNR. 21. Anticorps susceptible de reconnaître une protéine d'enveloppe, un peptide ou un polypeptide dérivé de ladite protéine d'enveloppe selon la revendication 11 22. Procédé de diagnostic in vitro d'une infection causée par le virus HIV-1 (VAU), ledit procédé comprenant - la mise en contact d'un sérum ou d'un autre milieu biologique provenant d'un malade faisant l'objet du diagnostic avec au moins une des protéines, glycoprotéines d'enveloppe du virus HIV 1(VAU) ou d'un polypeptide ou d'un peptide issu d'une de ces protéines ou glycoprotéines selon l'une quelconque des revendications 11 à 14 ou une composition selon l'une quelconque des revendications 15 à 20, et - la détection d'une réaction immunologique. 23. Réactif nécessaire à la réaction de western blot (immunoempreinte) ou d'ELISA comportant une protéine ou glycoprotéine d'enveloppe du virus HIV-1 (vAu) ou d'un polypeptide ou d'un peptide issu d'une de ces protéines ou glycoprotéines selon l'une quelconque des revendications 11 à 14 ou une composition selon l'une quelconque des revendications 15 à 20. 24. Utilisation d'une séquence nucléotidique selon la revendication 1 ou 2 pour induire in vivo la synthèse d'anticorps dirigés contre I' antigène codé par ladite séquence. 25. Composition immunogène selon l'une quelconque des revendications 15 à 20, capable d'induire des anticorps chez l'animal. 26. Trousse (kit) de diagnostic pour la détection in vitro sur un échantillon biologique, d'une infection par un rétrovirus HIV-1 du groupe O, par exemple d'un rétrovirus HlV-î(NIAU), caractérisée en ce qu'elle comprend: - des amorces selon la revendication 5 pour l'amplification génique d'un rétrovirus HIV-1 du groupe O. - des réactifs nécessaires à la réaction d'amplification génique. 27. Trousse de détection in vitro, sur un échantillon biologique, d'un rétrovirus HIV-1 du groupe O, caractérisée en ce qu'elle comprend comme sonde éventuellement marquée. au moins une séquence nucléotidique selon l'une des revendications 1, 2, 3, 4, 5, 6, 10 ou une composition selon l'une des revendications 7, 8 ou 9, et éventuellement une autre sonde nucléotidique selon l'une quelconque des revendications 1 à 6 ou composition selon l'une quelconque des revendications 7, 8 ou 9, éventuellement immobilisée sur un support solide. 28. Trousse selon la revendication 27, caractérisé en ce qu'elle comprend également les réactifs nécessaires à la mise en oeuvre d'une hybridation. 29. Souche bactérienne déposée à la CNCM le 20 octobre 1994 sous le numéro d'accession 1-1486.