Brevet FR2717498A1 — publié le 19950922

La présente invention est relative & des transcrits du gène du complexe majeur d'histocom- patibilité (CMH) de classe I HLA-G, présents dans les trophoblastes foetaux et/ou dans les lymphocytes circulants de l'adulte ainsi qu'à leurs applications. Les antigènes du complexe majeur d'histo- compatibilité (CMH), se divisent en plusieurs classes, les antigènes de classe I (HLA-A, HLA-B et HLA-C) qui présentent 3 domaines globulaires (a1, x2 et a3), et dont le domaine a3 est associé à la f2 microglobuline, les antigènes de classe II ((HLA-DP, HLA-DQ et HLA- DR) et les antigènes de classe III (complément). Les antigènes de classe I comprennent, outre les antigènes précités, d'autres antigènes, dits anti- gènes de classe I non classiques, et notamment les anti- gènes HLA-E, HLA-F et HLA-G; ce dernier, en particulier, est exprimé par les trophoblastes extravilleux du pla- centa humain normal. La séquence du gène HLA-G (gène HLA-6.0) a été décrite par GERAGHTY et al., (Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1987, al, 9145-9149): il comprend 4396 paires de bases et présente une organisation intron/exon homologue à celle des gènes HLA-A, -B et -C. De manière plus précise, ce gène comprend 8 exons et une extrémité non traduite 3'UT, correspondant respectivement: exon 1: séquence signal, exon 2: domaine al, exon 3: domaine a2, exon 4: domaine a3, exon 5: région transmembranaire, exon 6: domaine cytoplasmique I, exon 7: domaine cytoplas- mique II, exon 8: domaine cytoplasmique III et région 3' non traduite (GERAGHTY et al., précité, ELLIS et al., J. Immunol., 1990, 144, 731735). Toutefois le gène HLA-G diffère des autres gènes de classe I, en ce que le codon de terminaison de traduction, en phase, est localisé au niveau du deuxième codon de l'exon 6; en conséquence, la région cytoplasmique de la protéine codée par ce gène 2 HLA-6.0 est considérablement plus courte que celle des régions cytoplasmiques des protéines HLA-A, -B et -C. Contrairement aux autres antigènes de classe I, cet antigène HLA-G (clones G 6.0 et BeWO.G7) ne serait pas polymorphique et ne serait pas exprimé dans d'autres types cellulaires que les trophoblastes (ELLIS et al., J. Immunol., 1990, précité). D'autres clones HLA-G ont été isolés (TAMAKI et ai., Microbiol. Immunol., 1993, 37, 8, 633-640); en particulier, le clone HLA-G, dénommé 7.0E, a été isolé d'un placenta japonais et sa séquence en aminoacide s'est révélée identique à celle des clones précités G6.0 et BeWO.G7. Les Auteurs de cet article montrent, en outre, qu'il peut exister une certaine hétérogénéité dans les gènes HLA-G. Ces antigènes HLA-G sont essentiellement exprimés par les cellules cytotrophoblastiques du pla- centa; toutefois, l'ARNm HLA-G a été retrouvé dans les tissus de l'oeil et dans le foie foetal (ISHITANI et al., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1992, a9, 3947-3951; dont la numérotation correspond à celle de la séquence HLA 6.0 telle que décrite dans SHUKLA et al., Nucleic Acids Research, 1990, 18, 8, 2189). Les antigènes HLA-G exprimés par les cytotro- phoblastes sont considérés comme jouant un rôle dans la protection du placenta (absence de rejet). En outre, dans la mesure o l'antigène HLAG'est monomorphique, il peut également être impliqué dans la croissance ou la fonction des cellules placentaires (KOVATS et al., Science, 1990, 248, 220-223). D'autres recherches concernant cet antigène non classique de classe I (ISHITANI et ai., Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1992, 89, 3947-3951) ont montré que le transcrit primaire du gène HLA-G peut être épissé de plusieurs manières et produit au moins 3 ARNm matures distincts: le transcrit primaire d'HLA-G fournit une 3 copie complète (G1) de 1 200 bp, un fragment de 900 bp (G2) et un fragment de 600 bp (G3). Le transcrit G1 ne comprend pas l'exon 7 et correspond à la séquence décrite par ELLIS et al. (précité), c'est-à-dire qu'il code pour une protéine qui comprend une séquence leader, trois domaines externes, une région transmembranaire et une séquence cytoplas- mique. L'ARNm G2 ne comprend pas l'exon 3, c'est-à-dire qu'il code pour une protéine dans laquelle les domaines al et a3 sont directement joints; l'ARNm G3 ne contient ni l'exon 3, ni l'exon 4, c'est-à-dire qu'il code pour une protéine dans laquelle le domaine al et la séquence transmembranaire sont directement joints. L'épissage qui prévaut pour l'obtention de l'antigène HLA-G2 entraîne la jonction d'une adénine (A) (provenant du domaine codant pour al) avec une séquence AC (issue du domaine codant pour a3), ce qui entraîne la création d'un codon AAC (asparagine) à la place du codon GAC (acide aspartique), rencontré au début de la séquence codant pour le domaine a3 dans HLA-G1. L'épissage généré pour l'obtention de HLA-G3 n'entraine pas la formation d'un nouveau codon dans la zone d'épissage. Les Auteurs de cet article ont également ana- lysés les différentes protéines exprimées: les 3 ARNm sont traduits en protéine dans la lignée cellulaire 221-G. Les Auteurs de cet article concluent à un r81e fondamental de 1'HLA-G dans la protection du placenta vis-à-vis d'une réponse immune maternelle (induction d'une tolérance immune). Toutefois, il est précisé que le rôle de la protéine G3, qui ne contient pas le domaine a3 n'est pas établi. La complexité du CMH et le rôle de l'antigène HLA-G dans les mécanismes de tolérance ont conduit les Inventeurs à rechercher un transcrit HLA-G, qui pourrait à la fois: - aisément être mis en évidence dans le sang périphérique, - serait apte à exprimer, dans des conditions appropriées, une protéine convenable en tant qu'agent de tolérance, - permettrait de sélectionner des cellules souches immatures aptes à être utilisées dans des greffes de moelle osseuse, - et permettrait également de mettre en évi- dence dans le sang maternel, des cellules foetales dans lesquelles ce gène s'exprime. En conséquence, la présente invention s'est donné pour but de pourvoir à une séquence issue d'un ARNm du gène HLA-G apte à résoudre l'ensemble des problèmes exposés ci-dessus. Une telle séquence trouve application notam- ment: - dans la séparation, dans un échantillon de sang maternel, des cellules foetales, - dans un procédé d'enrichissement en cellules souches immatures, aptes à être utilisées dans les greffes de la moelle et - dans la séparation spécifique des lympho- cytes. La présente invention a pour objet une séquence d'ADNc issue d'un ARNm du gène HLA-G humain du CMH, caractérisée en ce qu'elle comprend successivement de 5' en 3': - un fragment codant pour le peptide signal (exon 1), - un fragment codant pour le domaine al (exon 2), - un fragment codant pour le domaine a2 (exon 3), - un fragment codant pour le domaine transmem- branaire TM (exon 5), - un fragment codant pour le domaine cytoplas- mique (exon 6) et - le fragment 3' non traduit (exon 8), laquelle séquence est dénommée HLA-G 3-5. Une telle séquence a la particularité de ne pas inclure l'exon 4 et de présenter l'ensemble des pro- priétés énumérées ci-dessus.10 Selon un mode de réalisation avantageux de l'invention, ladite séquence comprend successivement de ' en 3': - le fragment codant pour le domaine o2 (exon 3), - le fragment codant pour le domaine trans- membranaire TM (exon 5), - le fragment codant pour le domaine cytoplas- mique (exon 6) et - le fragment 3' non traduit (exon 8). Conformément à l'invention, une telle séquence qui code pour une protéine dans laquelle le domaine o2 et la séquence transmembranaire HLA- G sont directement joints, présente la formule I suivante: CC AAT GTG GCT GAA CAA AGG AGA GCC TAC CTG GAG GGC ACG TGC GTG GAG TGG CTC CAC AGA TAC CTG GAG AAC GGG AAG GAG ATG CTG CAG CGC GCG G3/5AG CAG TCT TCC CTG CCC ACC ATC CCC ATC ATG GGT ATC GTT GCT GGC CTG GTT GTC CTT GCA GCT GTA GTC ACT GGA GCT GCG GTC GCT GCT GTG CTG TGG AGX1 AAG AAG AGC TCA G5/6AT TGA AAA GGA GGG AGC TAC TCT CAG GCT GCA A6/8TG TGA8/ AACAGCTGCCCTGTGTGGGACTGAGTGGCAAGTCCCTTT GTGACTTCAAGAACCCTGACTTCTCTTTX2TGCAGAGACCAGCCCACCCCTGTGCCC ACCATGACCCTCTTX3CTCATGCTGAACTGCATTCCTTCCCCAATCACCTTTCCTGT TCCAGAAAAGGGGCTGGGATGTCTCCGTCTCTGTCTCA dans laquelle X1 représente G ou A, X2 représente C ou G, X3 représente T ou C, et comprend 0,43 kb. De manière inattendue, un tel transcrit est détecté aussi bien dans les trophoblastes (premier trimestre de gestation) que dans les lymphocytes circu- lants chez l'adulte. La présente invention a également pour objet un produit de transcription du gène HLA-G humain du CMH, caractérisé en ce qu'il inclut, à partir de l'extrémité ' - un fragment codant pour le peptide signal, - un fragment codant pour le domaine al, - un fragment codant pour le domaine a2, - un fragment codant pour le domaine trans- membranaire TM, et - un fragment codant pour le domaine cytoplas- mique de HLA-G et en ce qu'il comprend 0,43 kb. La présente invention a également pour objet des fragments oligonucléotidiques de la séquence conforme à l'invention; parmi ces fragments, dont la numérotation correspond à celle de la séquence HLA 6. 0, telle que décrite dans SHUKLA et al. précité, on peut citer: - GGA AGA GGA GAC ACCG GAA CA (formule II), dénommé G.257 (+), situé au niveau de l'exon 2 et corres- pondant au fragment 257-276 de ladite séquence d'ADNc; - CCA ATG TGG CTG AAC AAA GG (formule III), dénommé G.526 (+), situé au niveau de l'exon 3 et corres- pondant au fragment 526-545 de ladite séquence d'ADNc; - CCC CTT TTC TGG AAC AGG AA (formule IV), dénommé G.1200 (-) et correspondant au fragment 1200-1219 de ladite séquence d'ADNc; - TGA GAC AGA GAC GGA GAC AT (formule V), dénommé G.1225 (-) et correspondant au fragment 1225-1244 de ladite séquence d'ADNc; - CAG CGC GCG GAG CAG TCT TC (formule VI), dénommé G.3.5 (+) et correspondant à la jonction exon 3- exon 5 de ladite séquence d'ADNc. La présente invention a également pour objet des sondes nucléotidiques, caractérisées en ce qu'elles sont constituées par une séquence nucléotidique telle que définie ci-dessus ou un fragment de celle-ci, marquée à l'aide d'un marqueur tel qu'un isotope radioactif, une enzyme appropriée ou un fluorochrome. Selon un mode de réalisation avantageux de ladite sonde, elle présente la séquence de formule VI ci- dessus, spécifique du transcrit conforme à l'invention. Selon un autre mode de réalisation avantageux de ladite sonde, elle présente la séquence de formule IV ci-dessus; une telle sonde est apte à détecter tous les produits de transcription du gène HLA-G humain du CMH. La présente invention a également pour objet des amorces, aptes à être utilisées pour amplifier une séquence nucléotidique conforme à l'invention. Selon un mode de réalisation avantageux desdites amorces, une paire d'amorces préférée comprend: (1) GGA AGA GGA GAC ACCG GAA (formule II) (2) TGA GAC AGA GAC GGA GAC AT (formule V). Selon un autre mode de réalisation avantageux desdites amorces, une autre paire d'amorces préférée comprend: (3) CCA ATG TGG CTG AAC AAA GG (formule III) (4) TGA GAC AGA GAC GGA GAC AT (formule V). La présente invention a également pour objet des peptides ou fragments peptidiques, caractérisés en ce qu'ils sont codés par au moins un fragment tel que défini ci-dessus ou une portion de fragment ou une combinaison de plusieurs fragments tels que définis ci-dessus. Selon un mode de réalisation avantageux de l'invention, ledit peptide répond à la formule VII ci- apres: Asn-Val-Ala-Glu-Gln-Arg-Arg-Ala-Tyr-Leu-Glu-Gly-Thr-Cys- Val-Glu-Trp-Leu-His-Arg-Tyr-Leu-Glu-Asn-Gly-Lys-Glu-Met- Leu-Gln-Arg-Ala-Glu-Gln-Ser-Ser-Leu-Pro-Thr-Ile-Pro-Ile- 8 Met-Gly-Ile-Val-Ala-Gly-Leu-Val-Val-Leu-Ala-Ala-Val-Val- Thr-Glu-Ala-Ala-Val-Ala-Ala-Val-Leu-Trp-Arg-Lys-Lys-Ser- Ser-Asp. Selon un autre mode de réalisation avantageux des peptides conformes à l'invention, ils peuvent être obtenus par synthèse. Conformément à l'invention, de tels peptides trouvent application en tant que médicaments, notamment dans des compositions immunotolérantes. La présente invention a également pour objet un procédé de sélection et d'enrichissement en cellules hématopoiétiques indifférenciées (cellules sanguines immatures ou cellules souches), caractérisé en ce qu'il comprend: (a) le prélèvement d'un échantillon sélec- tionné, selon le cas, parmi le sang périphérique, le sang de cordon ombilical ou la moelle osseuse, (b) le mise en contact dudit échantillon avec des anticorps anti-CD34, (DYNABEADS; DYNAL/BIOSYS, Compiègne, France) (c) la séparation des complexes cellules contenant un antigène CD34-anticorps anti-CD34 formés, (d) la réalisation d'une RT- PCR in situ sur les cellules obtenues à l'étape (c) en présence d'une paire d'amorces marquées à l'aide d'un fluorochrome, conforme à l'invention, (e) la séparation des cellules fluorescentes, et (f) la sélection des cellules non fluores- centes immatures pluripotentes. Les cellules obtenues en (f) sont des cellules CD34+ HLA-G-, qui sont les cellules les plus immatures. Un tel procédé permet avantageusement d'obtenir un grand nombre de cellules souches immatures aptes à être utili-35 sées pour des greffes de cellules souches. Selon un mode de mise oeuvre avantageux dudit procédé, la paire d'amorces est sélectionnée parmi les paires (1)-(2) et (3)-(4) telles que définies ci-dessus. La présente invention a également pour objet un procédé de détection de cellules exprimant le trans- crit conforme à l'invention, caractérisé en ce qu'il com- prend, in situ, la mise en oeuvre d'une RT-PCR, par: (a) mise en contact de cellules sanguines avec une paire d'amorces marquées, conforme & l'invention et (b) séparation des cellules marquées par tout moyen convenable, notamment par cytofluorométrie. La RT-PCR est notamment décrite dans American J. Pathol., 1993, 143, 6, 1527-1534. La présente invention a également pour objet des anticorps dirigés contre les protéines HLA-G telles que définies ci-dessus. De manière préférée, de tels anticorps sont obtenus par irmmunisation d'un animal approprié, avec des peptides selon l'invention. La présente invention a également pour objet un procédé de séparation de cellules foetales nucléées, & partir d'un échantillon de sang maternel, caractérisé en ce qu'il comprend: (1) la mise en contact de l'échantillon de sang maternel avec des anticorps dirigés contre les pro- téines HLA-G telles que définies ci-dessus, et (2) la séparation des complexes cellules foetales-anticorps obtenus. Un tel procédé permet le dépistage prénatal d'anomalies foetales et notamment d'aberrations chromoso- miques ou d'aberrations géniques et un dépistage prénatal du sexe, à partir des cellules foetales circulantes ainsi isolées, de manière fiable, de la circulation sanguine maternelle, dans la mesure o seules ces cellules foetales sont porteuses desdites protéines HLA-G. La présente invention a également pour objet un procédé de séparation spécifique de lymphocytes circu- lants, caractérisé en ce qu'il comprend, la mise en oeuvre d'une RT- PCR in situ, par: (a) mise en contact de cellules sanguines avec une paire d'amorces marquées conforme à l'invention et (b) séparation des cellules marquées (cytofluorométrie...). Outre les dispositions qui précèdent, l'invention comprend encore d'autres dispositions, qui ressortiront de la description qui va suivre, qui se réfère à des exemples de mise en oeuvre du procédé objet de la présente invention. Il doit être bien entendu, toutefois, que ces exemples sont donnés uniquement à titre d'illustration de l'objet de l'invention, dont ils ne constituent en aucune manière une limitation. ZSLL: Transcrit du gène HLA-G épissé, sans exon 4. a) Obtention des cellules adultes et des tissus foetaux - Les trophoblastes du premier trimestre de gestation sont obtenus lors d'IVG (6-10 semaines de gestation). - Les foies foetaux du deuxième trimestre sont obtenus, lors d'interruptions thérapeutiques de grossesse (16 semaines de gestation). Les tissus sont lavés dans un tampon PBS et les trophoblastes ou le foie sont identifiés au micro- scope et congelés dans de l'azote liquide. - Des échantillons de sang périphérique humain sont obtenus chez des volontaires (homme normal). Les mononucléaires sont séparés des poly- nucléaires par centrifugation de densité (Ficoll- Hypaque ) et l'ARNm est isolé des deux populations. l1 On obtient également des mononucléaires enri- chis en lymphocytes B par immunoabsorption sur billes magnétiques recouvertes d'anticorps anti-CDl9 (Dynabeads- Dynal/Biosys, France) et des mononucléaires enrichis en5 lymphocytes T, par séparation sur Leuko-Pac (Fenwal Laboratories, USA). L'enrichissement est d'environ 90 % pour les cellules B et d'environ 87 % pour les cellules T, après estimation par analyse FACS: évaluation des complexes formés respectivement avec des anticorps anti-CD20 ou des anticorps anti-CD3, marqués au FITC et 1.105 cellules de chaque sous-population. b) Isolement de l'ARN et amplification nar RT- PCR: L'ARNm total est isolé à partir d'l g de tissu congelé ou de 2.107 cellules, en utilisant le réactif RNA-Zol B (Bioprobe Systems, France), conformément aux recommandations du fabriquant; la qualité du produit obtenu est vérifiée par électrophorèse sur gel d'agarose dénaturant à 1,5 %. L'ADNc est préparé à partir de 10 gg d'ARN total, en présence d'amorce oligo-dT et de transcriptase reverse M-MLV (Gibco-BRL, Life Technologies), par incuba- tion de 20 pl du mélange à 42'C pendant 1 heure, puis à 95'C pendant 5 minutes. Les fragments PCR qui peuvent être obtenus selon les amorces utilisées (voir Tableau I ci-après), sont représentés à la figure 1. Pour amplifier le transcrit G.3-5 conforme à l'invention (fragment de 0,43 kb), on utilise de préfé- rence les amorces G.526 et G.1225 (représentées par des flèches horizontales); la sonde utilisée pour détecter ce transcrit amplifié est la sonde G.3-5 (représentée par une ligne épaisse). Les flèches verticales indiquent les sites de restriction spécifiques des exons 3, 4 et 5, utiles pour l'analyse de restriction des produits de la RT-PCR, clo- nés dans le vecteur pPCRII (B: BglI; St: StuI; Ss: SstI). TABLEAU I Amorce Séquence 5'-43' Localisation ADNc ADN génomique G.257(+) GGA AGA GGA GAC ACCG 257-276 Ex 2 GAA CA G.526(+) CCA ATG TGG CTG AAC 526-545 Ex 3 AAA GG G.1200(-) CCC CTT TTC TGG AAC 1200-1219 3'-UT AGG AA G.1225(-) TGA GAC AGA GAC GGA 1225-1244 3'-UT GAC AT G.3-5(+) CAG CGC GCG GAG CAG 615-624/ Ex 3/Ex 5 TCT TC 901-910 Classe I (+) TCC CAC TCC ATG AGG 81-100 Ex 2 TAT TTC Classe I (-) TCC AGA AGG CAC CAC 814-833 Ex 4 CAC AG Afin de réduire la quantité de produit ampli- fié non spécifique, l'amplification est réalisée en uti- lisant une technique dite 'hot-startu: dans un tube de réaction, 200 pM de chaque dNTP, 0,1 gg de chaque amorce et une pastille d'AmpliWax (Cetus-Perkin Elmer, France), dans 50 g1 d'un tampon PCR lX, sont incubés à 75'C pen- dant 5 min; dans un second tube, 2 j1l de la solution de RT ou 1 gg d'ADN génomique et 3,5 U de Taq polymérase (Cetus-Perkin Elmer) dans 50 gl de tampon PCR 1X sont incubés à 95'C pendant 5 min. Le contenu des 2 tubes est ensuite mélangé et soumis à 35 cycles de PCR dans les conditions suivantes: 94'C pendant 1 minute, 61'C pendant 1 minute, 72'C pendant 1 minute 30. La dernière étape d'élongation à 72'C est de min. Les produits PCR sont analysés par électropho- rèse en gel d'agarose à 1 % et colorés au bromure d'éthidium. La spécificité des produits obtenus est confirmée par blotting alcalin des fragments (NaOH 0,4 N) sur une membrane de nylon (Hybond N+, Amershamn, France), puis une hybridation est ensuite réalisée dans un tam- pon: 5x SSPE, 5X Denhardt, SDS 0,5 %, ADN de sperme de saumon 100 ig/ml, pendant 2 h à 55'C, en présence d'une sonde oligonucléotidique G-1200 marquée au 32p ([y_15 32P]dATP) et d'un kit de marquage de l'extrémité 5' (Boehringer-Mannheim, France). Différents contrôles d'amplification sont réa- lisés: mélange réactionnel RT sans transcriptase reverse M-MLV (RT-) et mélange PCR sans matrice d'ADNc (blanc). Par ailleurs, des contrôles positifs sont réa- lisés avec des amorces ubiquitaires de la classe I des HLA (voir Tableau I). c) Rulaa: 1. Avec les amorces G.526 et G.1225, deux fragments (0,71 kb et 0,43 kb) sont observés après élec- trophorèse sur gel et coloration au bromure d'éthidium qui s'hybride avec la sonde G1200 (voir figure 1 et figures 2A et B). 2. La RT-PCR de l'ARNm du foie fétal du 2ème trimestre ne montre aucune bande sur le gel, ni aucun signal d'hybridation, alors que l'amplification avec des amorces des HLA de classe I entraîne un signal positif (figure 2C). L'amplification de l'ADN génomique présente une bande à environ 2,2 kb conformément à la séquence génomique d'HLA-G. 3. Le fragment de 0,71 kb correspond au trans- crit HLA-G complet tandis que 4. le fragment de 0,43 kb correspond à un transcrit ne contenant pas l'exon 4 (-*276 bp) (HLA-G.3- 5). Pour confirmer l'absence de l'exon 4, la bande de 0,43 kb est découpée et séquencée selon la méthode suivante: Pour générer des matrices de séquençage, les fragments PCR sont séparés par électrophorèse sur gel de polyacrylamide à 4 %, coupés et élues avec un tampon acé- tate d'ammonium 0,5 M et EDTA 5 mM et réamplifiés par PCR asymétrique, de manière à générer des produits simple- brin. Le produit réamplifié est purifié par extrac- tion au phénol-chloroforme, précipité 2 fois avec de l'éthanol, puis séquencé en utilisant le kit de séquen- çage T7 Sequenase 2.0 (USB/Touzard-Matignon, France). De plus, les produits de la PCR sont clones dans le vecteur pPCRII, en utilisant le kit TA Cloning System (Invitrogen, USA), puis séquences. Comme le montre la figure 3, le fragment de 0,43 kb présente clairement une jonction entre l'exon 3 et l'exon 5, qui résulte de la perte de l'exon 4. De plus, le séquençage montre que le transcrit conforme à l'invention ne comprend pas l'exon 7; la pré- sence d'un codon stop dans l'exon 6 est en outre obser- vée. 5. Evaluation de la fréquence du transcrit HLA-G.3-5: comme suggéré par la figure 2, l'intensité d'hybridation de la bande de 0,43 kb, correspondant au transcrit épissé, est plus faible que celle correspondant à la copie complète; ceci suggère que ce transcrit est moins abondant dans la population ARNm d'HLA-G. De manière à évaluer les quantités relatives de ces 2 transcrits, les produits de l'amplification PCR de l'ARNm des trophoblastes du ler trimestre avec les amorces G.526-G. 1225 sont clones dans le vecteur pPCRII, 5 comme précisé ci-dessus. Sur 260 clones analysés par hybridation des réplicas, soit avec la sonde G1200, soit avec la sonde G.3-5, environ 210 clones présentent une hybridation positive avec la sonde G.1200 et seulement un clone est positif avec la sonde G.3-5. Ce clone unique a été séquence, tandis que 5 clones positifs avec la sonde G.1200, choisis au hasard, sont analysés par leur carte de restriction vis-à-vis d'enzymes spécifiques des exons 3 et 4 (voir figure 1). Une comparaison des séquences montre que le clone positif avec la sonde G.3-5 ne comprend pas l'exon 4, tandis que les 5 autres clones correspondent au trans- crit complet. Ainsi, la fréquence du transcrit conforme à l'invention par rapport au transcrit comprenant la séquence complète peut être estimée à environ 1/200. La sélection de l'amorce G.526 (spécifique de l'exon 3) a permis d'obtenir., lors de l'amplification PCR, la sélection d'un transcrit dépourvu d'exon 4. * L'absence d'exon 4 crée, à la jonction d'épissage un codon GAG (Glu) à la place du codon GAC (Asp) que l'on retrouve dans le transcrit complet. L'absence d'exon 4 exclut le domaine a3 de la protéine déduite correspondante et confère une nouvelle structure à l'antigène HLA-G, qui peut être exprimé & la surface des cellules trophoblastiques. Dans cette structure, le domaine x2 et la région transmembranaire sont reliés et peuvent induire des modifications conformationnelles de la protéine de surface. En particulier, ladite protéine peut présenter une capacité différente de se lier aux peptides. : Expression du transcrit HLA-G complet ou du transcrit sans exon 4 dans les lymphocytes périphriques de l'adulte. La figure 4 montre les résultats de l'amplification PCR obtenue avec les amorces G.257- G.1225, à partir de matrices d'ADNc de cellules mononu- cléaires périphériques obtenues chez l'hommne (sujets mâles). Une bande de 1 kb est observée en gel d'agarose (Figure 4A); une hybridation avec la sonde G.1200 révèle une bande de même dimension (figure 4B). Conformément à la séquence d'ADNc, cette bande correspond au transcrit HLA-G complet. Pour confirmer la production de ce transcrit, le produit de la PCR est cloné dans un vecteur pPCRII puis séquencé, selon la méthode exposée ci-dessus. Le fragment de 1 kb est entièrement homologue avec la séquence HLA-G décrite par SHUKLA et al. (Nucleic Acids Research, 1990, 18, 8, 2189). L'amplification PCR de l'ADNc à partir d'une population de polynucléaires avec des amorces spécifiques HLA-G génère une bande de faible intensité de même dimen- sion, 0,71 kb, que celle observée avec les mononucléaires (contamination de la fraction polynucléaire par des mono- nucléaires). Pour préciser la spécificité cellulaire de l'expression du gène HLA-G chez les lymphocytes circu- lants de l'adulte, les populations mononucléaires ont été séparées et une PCR a été réalisée avec des amorces spé- cifiques HLA-G sur l'ADNc obtenu à partir de sous-popula- tions enrichies en cellules T ou en cellules B. Une bande de 1 kb est observée pour les frac- tions cellules T aussi bien en gel d'agarose qu'en ana- lyse par blot après hybridation avec la sonde G.1200 (figures 4A et B) (transcrit complet). L'utilisation d'une technique PCR hot-start a permis de mettre en évidence la présence d'ARNm de HLA-G dans les lymphocytes périphériques de l'adulte, ce trans- crit étant présent à la fois dans les cellules B et les cellules T. Une bande de 0,43 kb pourrait également être observée. Ainsi que cela ressort de ce qui précède, l'invention ne se limite nullement & ceux de ses modes de mise en oeuvre, de réalisation et d'application qui vien- nent d'être décrits de façon plus explicite; elle en em- brasse au contraire toutes les variantes qui peuvent ve- nir à l'esprit du technicien en la matière, sans s'écarter du cadre, ni de la portée de la présente inven- tion. REVENDICATIONS 1') Séquence d'ADNc issue d'un ARNm du gène HLA-G humain du CMH, caractérisée en ce qu'elle comprend successivement de 5' en 3': - un fragment codant pour le peptide signal (exon 1), - un fragment codant pour le domaine al (exon 2), - un fragment codant pour le domaine a2 (exon 3), - un fragment codant pour le domaine trans- membranaire TM (exon 5), - un fragment codant pour le domaine cytoplas- mique (exon 6) et - le fragment 3' non traduit (exon 8), laquelle séquence est dénommée HLA-G 3-5. 2') Séquence selon la revendication 1, caractérisée en ce qu'elle comprend successivement de 5' en 3': - le fragment codant pour le domaine a2 (exon 3), - le fragment codant pour le domaine transmem- branaire TM (exon 5), - le fragment codant pour le domaine cytoplas- mique (exon 6) et - le fragment 3' non traduit (exon 8). 3') Séquence selon la revendication 2, caractérisée en ce qu'elle code pour une protéine dans laquelle le domaine a2 et la séquence transmembranaire de HLA-G sont directement joints, en ce qu'elle présente la formule I suivante: CC AAT GTG GCT GAA CAA AGG AGA GCC TAC CTG GAG GGC ACG TGC GTG GAG TGG CTC CAC AGA TAC CTG GAG AAC GGG AAG GAG ATG CTG CAG CGC GCG G3/5AG CAG TCT TCC CTG CCC ACC ATC CCC ATC ATG GGT ATC GTT GCT GGC CTG GTT GTC CTT GCA GCT GTA GTC ACT GGA GCT GCG GTC GCT GCT GTG CTG TGG AGX1 AAG 19 AAG AGC TCA G5/6AT TGA AAA GGA GGG AGC TAC TCT CAG GCT GCA A6/8TG TGA8/ AACAGCTGCCCTGTGTGGGACTGAGTGGCAAGTCCCTTT GTGACTTCAAGAACCCTGACTTCTCTTTX2TGCAGAGACCAGCCCACCCCTGTGCCC ACCATGACCCTCTTX3CTCATGCTGAACTGCATTCCTTCCCCAATCACCTTTCCTGT 5 TCCAGAAAAGGGGCTGGGATGTCTCCGTCTCTGTCTCA dans laquelle X1 représente G ou A, X2 représente C ou G, X3 représente T ou C, et en ce qu'elle comprend 0,43 kb. 4') Produit de transcription du gène HLA-G humain du CHH, caractérisé en ce qu'il inclut, à partir de l'extrémité ': - un fragment codant pour le peptide signal, - un fragment codant pour le domaine ai, - un fragment codant pour le domaine a2, - un fragment codant pour le domaine transmem- branaire TM, et - un fragment codant pour le domaine cytoplas- mique de HLA-G et en ce qu'il comprend 0,43 kb. 5') Oligonucléotide, caractérisé en ce qu'il est constitué par un fragment de la séquence selon l'une quelconque des revendications 1 à 4 et en ce qu'il pré- sente la séquence de formule II suivante: GGA AGA GGA GAC ACCG GAA CA, dénommée G.257 (+). 6') Oligonucléotide, caractérisé en ce qu'il est constitué par un fragment de la séquence selon l'une quelconque des revendications 1 à 4 et en ce qu'il pré- sente la séquence de formule III suivante: CCA ATG TGG CTG AAC AAA GG, dénommée G.526 (+). 7') Oligonucléotide, caractérisé en ce qu'il est constitué par un fragment de la séquence selon l'une quelconque des revendications 1 à 4 et en ce qu'il pré- sente la séquence de formule IV suivante: CCC CTT TTC TGG AAC AGG AA, dénommée G.1200 (-). 8') Oligonucléotide, caractérisé en ce qu'il est constitué par un fragment de la séquence selon l'une quelconque des revendications 1 à 4 et en ce qu'il pré- sente la séquence de formule V suivante: TGA GAC AGA GAC GGA GAC AT, dénommée G.1225 (-). 9') Oligonucléotide, caractérisé en ce qu'il est constitué par un fragment de la séquence selon l'une quelconque des revendications 1 à 4 et en ce qu'il pré- sente la séquence de formule VI suivante: CAG CGC GCG GAG CAG TCT TC, dénommée G.3.5 (+). ') Sondes nucléotidiques, caractérisées en ce qu'elles sont constituées par une séquence nucléotidique selon l'une quelconque des revendications 1 à 9 ou un fragment de celle-ci, marquée à l'aide d'un marqueur tel qu'un isotope radioactif, une enzyme appropriée ou un fluorochrome. 11') Sonde selon la revendication 10, caractérisée en ce qu'elle présente la séquence de formule VI selon la revendication 9. 12') Sonde selon la revendication 10, caractérisée en ce qu'elle présente la séquence de formule IV selon la revendication 7. 13') Paires d'amorces pour la synthèse d'une séquence selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisées en ce que chaque amorce comprend une séquence ou un fragment de séquence selon l'une quel- conque des revendications 5 à 9.. 14') Paire d'amorces selon la revendication 13, caractérisée en ce qu'elle est constituée par un oligo- nucléotide de formule II selon la revendication 5, appa- rié à un oligonucléotide de formule V selon la revendica- tion 8. ') Paire d'amorces selon la revendication 13, caractérisée en ce qu'elle est constituée par un oligonu- cléotide de formule III selon la revendication 6, apparié à un oligonucléotide de formule V selon la revendication 8. 16') Peptides ou fragments peptidiques, caractérisés en ce qu'ils sont codés par au moins un fragment selon l'une quelconque des revendications 1 à 4. 17') Peptide selon la revendication 16, caractérisé en ce qu'il répond à la formule VII ci-après: Asn-Val-Ala-Glu-Gln-Arg-Arg-Ala-Tyr-Leu-Glu-Gly-Thr-Cys- Val-Glu-Trp-Leu-His-Arg-Tyr-Leu-Glu-Asn-Gly-Lys-Glu-Met- Leu-Gln-Arg-Ala-Glu-Gln-Ser-Ser-Leu-Pro-Thr-Ile-Pro-Ile- Met-Gly-Ile-Val-Ala-Gly-Leu-Val-Val-Leu-Ala-Ala-Val-Val- Thr-Glu-Ala-Ala-Val-Ala-Ala-Val-Leu-Trp-Arg-Lys-Lys-Ser- Ser-Asp. 18') Procédé de sélection et d'enrichissement en cellules hématopoiétiques indifférenciées (cellules sanguines immatures ou cellules souches), caractérisé en ce qu'il comprend: (a) le prélèvement d'un échantillon sélec- tionné, selon le cas, parmi le sang périphérique, le sang de cordon ombilical ou la moelle osseuse, (b) le mise en contact dudit échantillon avec des anticorps anti-CD34, (c) la séparation des complexes cellules contenant un antigène CD34-anticorps anti-CD34 formés, (d) la réalisation d'une RT-PCR in situ sur les cellules obtenues à l'étape (c) en présence d'amorces marquées à l'aide d'un fluorochrome selon l'une quel- conque des revendications 13 à 15, (e) la séparation des cellules fluorescentes, obtenues et (f) la sélection des cellules non fluores- centes immatures pluripotentes. 19') Procédé de détection de cellules exprimant le trans- crit selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisé en ce qu'il comprend, in situ, la mise en oeuvre d'une RTPCR, par: (a) mise en contact de cellules sanguines avec une paire d'amorces marquées selon l'une quelconque des revendications 13 à 15 et (b) séparation des cellules marquées par tout moyen convenable. ') Anticorps, caractérisés en ce qu'ils sont dirigés contre les protéines HLA-G selon la revendication 16 ou la revendication 17. 21') Procédé de séparation de cellules foetales nucléées, à partir d'un échantillon de sang maternel, caractérisé en ce qu'il comprend: (1) la mise en contact de l'échantillon de sang maternel avec des anticorps dirigés contre les pro- téines HLA-G selon la revendication 20, et (2) la séparation des complexes cellules foe- tales-anticorps obtenus. 22') Procédé de séparation spécifique de lymphocytes circulants, caractérisé en ce qu'il comprend, in situ, la mise en oeuvre d'une RTPCR, par: (a) mise en contact de cellules sanguines avec une paire d'amorces marquées selon l'une quelconque des revendications 13 à 15 et (b) séparation convenable des cellules mar- quées. 23') Médicament, caractérisé en ce qu'il comprend un peptide selon la revendication 16 ou la revendication 17 24') Compositions immunotolérantes, caractérisées en ce qu'elles comprennent un peptide selon la revendication 16 ou la revendication 17, associé à un véhicule ou un support convenable du point de vue pharmaceutique.