Brevet FR2718849A1 — publié le 19951020

La présente invention concerne un procédé immunologique de dosage de l'antithrombine III (AT III) activée par l'un des glycosaminoglycanes sulfatés, connus pour agir sur le processus de la coagulation sanguine au niveau de l'AT III. En présence d'héparine 1'AT III exerce son activité anticoagulante en inhibant différentes protéases sériques, impliquées dans les réactions conduisant à la formation de la fibrine insoluble, particulièrement la thrombine et le facteur Xa. On connait divers glycosaminoglycanes, analogues biochimiques, qui en se fixant sur 1'AT III interrompent la suite de réactions enzymatiques aboutissant au caillot ; on peut citer notamment les héparines naturelles, de porc ou de boeuf, les héparines de bas poids moléculaire, dont plusieurs types sont commercialisés et certains oligosaccharides sulfatés, dont ceux décrits dans les demandes de brevet EP-A-84999, EP-A-133599 et EP-A- 3 5 6 2 notamment le pentasaccharide reconnu comme constituant la séquence des chaînes d'héparine sur lequel 1'AT III se fixe. Ces composés peuvent être utilisés chez l'homme comme anticoagulants et antithrombotiques dans des traitements prophylactiques ou thérapeutiques ; mais le suivi de l'état du système de la coagulation au cours de ces traitements est indispensable étant donné leurs effets secondaires potentiels et notamment leurs risques hémorragiques, variables selon les individus. La surveillance repose actuellement sur des méthodes biologiques qui consistent à déterminer in vitro l'action inhibitrice au niveau du facteur Xa, des glycosaminoglycanes sulfatés présents dans le sang du patient, soit par un test de coagulation spécifique de ce facteur, soit par la mesure de son activité résiduelle sur un substrat chromogène. On peut pour la description de ces tests, se référer à l'ouvrage l'héparine - J.P. Duclos - Editions Masson (1984). Chez l'homme, les concentrations sanguines efficaces des glycosaminoglycanes antithrombotiques sont faibles, inférieures à 10 uM et en l'absence d'anticorps spécifiques, aucun dosage direct de ces produits, utilisable en routine dans les laboratoires d'analyses biologiques, n'a été développé. Pourtant, il faut noter que les résultats obtenus avec les deux méthodes précédentes sont parfois divergents et mal corrélés avec l'activité antithrombotique observée in vivo et avec l'importance des risques hémorragiques comme le mentionnent A. Leizorovicz, L. Bara, M.M. Samama et M.C. Haugh dans Haemostasis 1993 - 23 (supl)89-98; en outre, ils ne reflètent pas toujours la situation clinique et notamment sous-estiment les taux élevés d'héparine et de glycosaminoglycanes analogues. I1 était donc souhaitable de disposer d'une méthode simple et fiable permettant dans la cascade de la coagulation, d'apprécier l'importance de l'action de l'un de ces glycosaminoglycanes sulfatés sur 1'AT III plasmatique. On sait que cette action, au cours de laquelle l'héparine ou ses analogues se fixent transitoirement sur 1'AT III, se traduit notamment par une modification conformationnelle de la protéine qui est à l'origine de l'augmentation de la vitesse d'inhibition du facteur Xa. La détermination de la proportion, vraisemblablement faible, d'AT III dans cet état activé, c'est à dire dans une forme modifiée par la fixation de l'héparine ou de glycosaminoglycanes, qui précède la fixation covalente de 1'AT III aux autres protéases de la coagulation, doit permettre de mieux apprécier, que par les méthodes biologiques antérieures, l'intensité de l'action inhibitice du glycosaminoglycane sulfaté présent dans le plasma. On sait que les anticorps monoclonaux sont bien adaptés à l'identification et la détermination de conformations spatiales spécifiques et la présente invention concerne un procédé d'immunodosage, de type sandwich, encore appelé de type extraction-saturation, pour la détermination de l'antithrombine III activée par un glycosaminoglycane sulfaté, mettant en jeu un couple d'anticorps monoclonaux qui, associés, reconnaissent plus efficacement 1'AT III activée par l'un de ces glycosaminoglycanes sulfatés que l'AT III native ou 1'AT III dénaturée. L'un de ces anticorps reconnait en solution, moins efficacement 1'AT III native que 1'AT III activée par l'un des glycosaminoglycanes sulfatés; l'autre ne reconnait en solution pratiquement pas 1'AT III native ou activée mais reconnait 1'AT III dénaturée. Par AT III native, on entend 1'AT III purifiée ou non, en solution dans un tampon ou dans un plasma, éventuellement dilué. Par AT III activée par un glycosaminoglycane sulfaté, antithrombotique, on entend 1'AT III en solution, dans un tampon ou dans un plasma éventuellement dilué, dans lequel se trouve aussi le glycosaminoglycane, à des concentrations relatives compatibles avec leurs activités biologiques. Normalement, la concentration plasmatique de 1'AT III est voisine de 2,7 WM; elle est inférieure dans certains états pathologiques héréditaires ou acquis. Les concentrations plasmatiques maximales tolérables des glycosaminoglycanes sulfatés antithrombotiques sont fonction de leurs activités intrinsèques et de leur toxicité. On sait par exemple, que pour l'héparine, la concentration au pic plasmatique est environ de 0,4 pM, tandis que pour les héparines de bas poids moléculaire, elle peut atteindre 2uM; pour le pentasaccharide A de formule décrit dans Thromb. Res. 1986, 43, 243-248, la concentration sera de l'ordre de 1AM. Par AT III dénaturée, on entend l'AT III traitée par la guanidine ou un de ses sels comme décrit par J. Watton et coll. dans Biochem. 1993, 32 6501-6505, de telle sorte que sa conformation au niveau du site de liaison de l'AT III à l'héparine et de celui à la protéase qu'elle inhibe, soient modifiées. Un autre exemple d'AT III dénaturée est l'AT III adsorbée sur la surface d'un polymère, par exemple sur celle des puits d'une plaque de microtitration ou de microbilles, en polystyrène ou en chlorure de polyvinyle, couramment utilisés en immunodiagnostic. Dans tout le texte par AT III, on entend l'antithrombine III humaine ou de l'espèce animale chez qui on pratiquera l'immunodosage selon l'invention. On utilisera de préférence, comme solution diluante, un tampon phosphate salin, ou un tampon à base de trishydroxyméthylaminométhane (Tris), isotonique et dépourvu de calcium libre, étant donné les phénomènes d'association entre l'AT III et les glycosaminoglycanes. La solution sera rendue isotonique par exemple par addition de NaCl, en général à une concentration voisine de 0,15 M; pour éliminer les ions calciques, on pourra les complexer par addition d'un agent séquestrant connu, tel que l'acide éthylènediaminotétraacétique (EDTA). Les anticorps monoclonaux nécessaires à la mise en oeuvre du procédé d'immunodosage sont aussi un objet de l'invention. Des anticorps monoclonaux dirigés contre des épitopes de l'antithrombine III ont déjà été décrits notamment dans Eur. J. Biochem 180 319-326 (1989) Blood Coagulation Fibrinolysis 1 619-626 (1990) ou Hybridoma 10 633-640 (1991). Leur fixation au complexe covalent antithrombine III/thrombine ou à l'antithrombine III en présence d'héparine, a parfois été étudiée mais il n'a pas encore été mentionné, ni suggéré, que des anticorps monoclonaux puissent se lier à l'AT III activée par la fixation d'héparine, ou de glycosaminoglycanes sulfatés analogues, mieux qu'à l'AT III native. Selon un premier aspect, 1 invention concerne les anticorps monoclonaux qui reconnaissent l'antithrombine III en solution, activée par la fixation d'un glycosaminoglycane sulfaté biochimiquement analogue à l'héparine, et qui reconnaissent éventuellement l'antithrombine III en solution dans son état natif, purifiée ou non mais qui alors se fixent préférentiellement sur l'AT III activée. La capacité des anticorps monoclonaux de l'invention à reconnaitre préférentiellement l'AT III activée peut être étudiée par tout moyen permettant la mesure ou l'appréciation de 11 affinité de l'anticorps pour son antigène. On peut notamment utiliser un appareil qui permet le suivi de la variation de la quantité de macromolécules, telles que des protéines, qui sont fixées, directement ou non, sur une surface de verre recouverte d'une fine couche d'or, par une mesure de l'angle de réflexion totale d'un rayon lumineux monochromatique polarisé sur ladite surface, phénomène connu sous le nom de résonance plasmonique de surface; cette technique est décrite, notamment, dans J. chromat. 597 397-410 (1992), et EP-A-341927. Un appareil de ce type est commercialisé par la société Pharmacia, Suède sous la marque BIAcore R ou par Fisons Applied Sensor technology, Grande-Bretagne sous le nom Iasys. Pour déterminer l'affinité d'un antigène pour un anticorps, l'un des deux éléments de la paire immunologique est lié sur la surface de verre, le biocapteur, tandis que l'autre se trouve dans une solution qui circule en continu au contact de la dite surface, dans la cellule de mesure ; le signal est une fonction de la quantité de matière se fixant sur le biocapteur ce qui permet la détermination de la vitesse de complexation de l'antigène et de l'anticorps. En général, l'élément "lié" à la surface, l'est par l'intermédiaire d'un anticorps qui y est fixé par une liaison covalente. Dans la mesure où le procédé immunologique selon l'invention vise à étudier l'AT III en présence de glycosaminoglycane sulfaté en solution, c'est l'anticorps à étudier qui sera fixé sur la surface sensible, par exemple comme préconisé par le fabricant, par l'intermédiaire d'un anticorps antiimmunoglobulines de l'espèce de l'anticorps étudié tandis que 11 antigène sera introduit dans la solution circulante, qui pourra être le plasma d'un sujet normal, éventuellement dilué ou une solution d'un tampon; la concentration de l'antigène y sera fonction des caractéristiques spécifiques de l'appareil et notamment de la quantité d'anticorps lié à la surface sensible. Dans les essais en présence d'héparine et des glycosaminoglycanes analogues, le rapport des concentrations de ceux-ci à l'AT III sera de l'ordre de 1 à 100 fois le rapport maximum que l'on pourra trouver in vivo; on sait en effet que l'AT III activée est toujours en présence d'une forte proportion d'AT III restée libre et il importe de déplacer l'équilibre vers l'AT III activée en utilisant un net excès d'activateur héparinique, afin de pouvoir faire une mesure significative avec cet appareil BIAcore R. On peut aussi déterminer les affinités relatives d'un anticorps monoclonal pour l'AT III et l'AT III activée en le comparant dans le procédé de l'invention avec un anticorps monoclonal connu répondant à 1' invention. Selon un second aspect, l'invention concerne les anticorps monoclonaux qui ne reconnaissent pratiquement pas l'AT III native et 1'AT III activée par les glycosaminoglycanes biologiquement analogues à l'héparine mais qui reconnaissent l'AT III dénaturée. L'absence d'affinité de ce second type d'anticorps monoclonaux vis à vis de l'AT III native ou activée peut aussi être étudiée avec un appareil analogue à celui précédemment cité, étant entendu qu'on considèrera que l'anticorps ne reconnait pratiquement pas l'AT III activée ou native quand le signal mesuré avec le BIAcore R sera plus de deux ou trois fois inférieur à celui mesuré avec les autres types d'anticorps. L'affinité pour l'AT III dénaturée, notamment par traitement par du chlorure de guanidine, peut aussi être étudiée avec un appareil de détermination des affinités immunologiques mais aussi, plus simplement, par un immunoessai classique, par exemple en phase solide dans lequel 1'AT III sera immobilisée par adsorption et l'anticorps monoclonal à étudier qui serait immunofixé sur 1'AT III adsorbée après incubation, sera révélé, par exemple, par un anticorps anti-immunoglobulines de souris marqué de façon classique; de préférence l'anticorps à étudier sera immobilisé et 1'AT III dénaturée, qui y serait immunofixée après incubation, sera révélée par un anticorps polyclonal anti-AT III marqué; dans les mêmes conditions, 1'AT III native ne devra pratiquement pas être reconnue. Parmi les anticorps monoclonaux de l'invention ne reconnaissant ni l'AT III activée, ni 1'AT III native mais reconnaissant 1'AT III dénaturée, on préfère particulièrement, l'anticorps secrété par l'hybridome dépose le 18 mars 1994 conformément au Traité de Budapest, auprès de la Collection allemande de microorganismes DSM, sous le numéro Acc 2167. Cet hybridome est un autre objet de l'invention, comme ceux qui secrètent les différents types d'anticorps monoclonaux conformes à l'invention. Selon un autre de ses aspects, l'invention concerne le procédé d'obtention de ceux-ci. Ce procédé consiste à effectuer une hybridation lymphocytaire en immunisant des animaux avec de l'antithrombine III humaine, activée par un oligosaccharide sulfaté antithrombotique puis à sélectionner les hybridomes producteurs d'anticorps monoclonaux présentant les propriétés immunologiques recherchées c'est-à-dire ceux qui ont plus d'affinité pour l'AT III activée en solution que pour l'AT III native et ceux qui reconnaissent l'AT III dénaturée par exemple par la guanidine et ses sels, notamment le chlorhydrate de guanidine et ne reconnaissent pratiquement pas l'AT III native et 1'AT III activée. Les animaux, de préférence des souris, sont immunisés par une méthode classique, par injection répétée, notamment par voie intrapéritonéale, d'AT III humaine puis de l'oligosaccharide choisi ou du mélange d'AT III et d'oligosaccharide. Il n'est en général pas nécessaire de répéter l'injection de l'AT III tandis qu'une injection journalière d'oligosaccharide, devra être pratiquée, pendant 4 à 6 jours, pour maintenir l'AT III en présence d'une forte concentration de l'oligosaccharide pendant un certain temps. L'homme du métier adaptera le nombre d'injections à la durée de vie de l'activateur. Pour l'immunisation, les oligosaccharides sulfatés convenant à l'activation de 1'AT III seront choisis parmi les molécules de 5 à 20 unités saccharidiques, de préférence de 5 à 10, qui sont biologiquement équivalentes à l'héparine et activent l'AT III, telles que celles décrites dans les brevets européens nO 84999, 133599 et 356275 qui peuvent être préparées par synthèse chimique. On préfère particulièrement le pentasaccharide A précédemment cité. Les doses d'AT III injectées doivent être suffisantes pour déclencher une réaction immunitaire, y compris contre la forme activée, mais ne doivent pas être à l'origine d'hémorragies graves; en général, on injectera de 20 ug à 60 pg d'AT III pour une souris de 25 g environ. Si un anticorps monoclonal de l'héparine a été décrit récemment dans Anal. Biochem 1992 201 1-8, qui ne reconnait pas un épitope lié à l'activité anticoagulante, les oligosaccharides ne sont en général pas immunogènes par eux-mêmes, de telle sorte qu'on peut les administrer à des doses permettant d'obtenir des concentrations suffisantes pour qu'une réaction immunologique sensible se produise contre 1'AT III activée, qui s'est formée chez l'animal. Il est évident que la dose journalière d'oligosaccharide injectée doit aussi être compatible avec la survie des souris ; pour le pentasaccharide A, elle peut être comprise entre 10 et 30 pg par souris. Pour les oligosaccharides de durée de vie plus longue, une seule injection du mélange est en général suffisante. Les injections peuvent avantageusement être répétées après quelques jours ou quelques semaines Le protocole d'immunisation n'est pas critique, du moment que l'on tient compte des risques de toxicité, notamment des hémorragies possibles. On peut notamment appliquer la méthode décrite dans Eur. J. Biochem 180 319-326 (1989). On sélectionne alors les souris pouvant convenir à l'hybridation lymphocytaire en recherchant l'immunsérum qui présente la plus forte réaction immunologique vis-à-vis de 1'AT III en solution; on a en effet constaté que dans un tel sérum polyclonal on trouve à la fois des anticorps dirigé contre l'AT III native et l'AT III activée en solution et contre l'AT III dénaturée et il n'est pas nécessaire à ce stade de mettre en oeuvre des procédés de sélection plus complexes. L'affinité du sérum pour l'AT III en solution est déterminée par une méthode immunométrique classique, en immobilisant le sérum à étudier par adsorption sur une surface de plastique ou par l'intermédiaire d'un anticorps anti-IgG de souris, avant une incubation avec une solution d'AT III native, puis après lavage, en mettant en contact un anticorps anti-AT III marqué, suivi d'une étape classique de révélation. L'isolement des splénocytes et l'hybridation cellulaire sont ensuite effectués selon un procédé connu; on pourra notamment se référer à l'article de J. Immunol. Methods 35 1-21 (1980) - production of monoclonal antibodies : strategy and tactics - ou aux publications décrivant la préparation d'anticorps anti AT III, et par exemple à Biochem. Biophys. Acta 952 3747 (1988). L'identification des hybridomes secrétant des anticorps monoclonaux qui présentent l'une ou l'autre des affinités caractéristiques des différents types d'anticorps conformes à l'invention, peut être réalisée à l'aide d'un appareil permettant de déterminer l'intensité des réactions immunologiques, tel que ceux précédemment cités. On peut aussi,lorsque l'on a précédemment isolé un anticorps répondant à l'invention, rechercher un anticorps complémentaire en mettant en oeuvre un immunoessai de type sandwich, avec comme antigènes selon le cas AT III native, activée ou dénaturée. Par anticorps complémentaires, on entend un anticorps de l'invention qui reconnait mieux 1'AT III activée que l'AT III native et un anticorps de l'invention qui reconnait l'AT III dénaturée et pratiquement pas l'AT III native et activée, de telle sorte que mis en oeuvre dans un procédé de dosage immunométrique de type sandwich par exemple, ils reconnaissent préférentiellement 1'AT III activée en solution, sachant qu'elle est toujours en présence d'AT III native. On peut notamment utiliser comme anticorps connu l'anticorps DsM n" hoc 2167 pour trouver un anticorps complémentaire ; dans le cas où il est immobilisé, après sa réaction avec l'AT III ou l'AT III activée en solution, puis l'anticorps monoclonal à étudier, on pourra révéler avec un anticorps anti-IgG de souris marqué; si c'est l'anticorps monoclonal à étudier qui est immobilisé, notamment par adsorption ou par l'intermédiaire d'un anticorps anti-IgG de souris, après sa réaction avec 1'AT III ou 1'AT III activée en solution, on pourra révéler avec l'anticorps DSM nO marqué. Des procédés du même type peuvent être mis en oeuvre pour trouver des anticorps analogues de l'anticorps DSM n" soc 2167 , en utilisant un anticorps connu complémentaire. Dans le cas où la sélection des hybridomes est faite avec un appareil d'étude de l'intensité des réactions immunologiques, tel que l'appareil BIAcore, pour identifier un anticorps monoclonal reconnaissant mieux 1'AT III activée en solution que l'AT III native, on fixera l'anticorps à étudier sur le biocapteur et on fera circuler dans la cellule soit une solution d'AT III activée, soit une solution d'AT III native. Pour identifier un anticorps monoclonal reconnaissant 1'AT III dénaturée sans reconnaitre pratiquement l'AT III native ou activée, on fixera l'anticorps et on fera circuler successivement une solution d'AT III native, puis activée et enfin dénaturée par action de la guanidine. Ce type d'étude est long et coûteux et on préfère présélectionner les hybridomes susceptibles de convenir en utilisant un procédé d'immunodosage. Pour sélectionner les anticorps reconnaissant mieux l'AT III activée que l'AT III native, on pourra faire un dosage immunométrique de type sandwich, en phase solide. Par exemple, les anticorps du surnageant à étudier seront immobilisés par adsorption sur une surface ou de préférence par l'intermédiaire d'un anticorps anti-immunoglobuline de souris, puis incubés avec une solution d'AT III contenant ou non l'oligosaccharide et après lavage, avec un anticorps anti-AT III marqué, avant d'effectuer la révélation de façon classique. Pour sélectionner les anticorps reconnaissant 1' AT III dénaturée on adsorbera l'AT III sur une surface éventuellement en présence de l'oligosaccharide avant incubation avec l'anticorps à étudier; la révélation sera effectuée avec un anticorps anti-immunoglobulines de souris, marqué. Les anticorps sélectionnés répondant à l'invention peuvent être produits en quantité suffisante en ascite, sur des souris prétraitées au pristane; ils peuvent alors être purifiés par chromatographie sur une colonne sur laquelle a été fixée de la protéine A, par exemple sur une colonne de sépharoseR. Ces techniques sont bien connues et décrites pour les anticorps dirigés contre 1'AT III dans Hybridoma 10 633-640 (1991). Dans tous les immunoessais, les rapports molaires de l'oligosaccharide activateur et de l'AT III peuvent être supérieurs à ceux que l'on peut trouver in vivo; néanmoins, la concentration d'activateur utilisée ne sera pas de préférence multipliée par plus de 10 par rapport à sa concentration habituelle,in vivo,tandis que la concentration d'AT III restera proche de sa concentration physiologique, comprise entre 1 WM et 4 WM environ. Selon un autre aspect, 1 invention concerne un procédé de détermination in vitro de 1'AT III activée par un glycosaminoglycane sulfaté, analogue biologique de l'héparine, qui consiste à effectuer un immunodosage, dit de type sandwich ou à deux sites, en utilisant un anticorps monoclonal qui reconnait mieux 1'AT III activée que l'AT III en solution et un anticorps monoclonal qui ne reconnait pratiquement pas l'AT III native et l'AT III activée mais reconnait l'AT III dénaturée par action de la guanidine ou de l'un de ses sels, ou par adsorption. Les anticorps monoclonaux convenant pour ces dosages peuvent être obtenus avec des animaux immunisés contre 1' AT III en présence d'un glycosaminoglycane sulfaté qui peut être différent de celui présent dans l'échantillon à déterminer et l'immunisation est, de préférence, en général réalisée avec un oligosaccharide sulfaté qui complexe l'AT III et a une activité antithrombotique, tel que le pentasaccharide A, précédemment cité. Néanmoins, notamment parce qu'après traitement d'un sujet par l'un quelconque des glycosaminoglycanes activateurs, seulement une faible proportion de 1'AT III est sous forme activée, il est nécessaire de tracer la courbe d'étalonnage permettant de déterminer la quantité d'AT III sous forme activée dans un liquide biologique, avec des solutions d'AT III activée par le même glycosaminoglycane que celui connu que l'on veut étudier. L'immunodosage est de préférence effectué en un temps, c'est à dire que l'on incube la solution à étudier simultanément avec les deux anticorps, avant de séparer l'anticorps de marquage n'ayant pas réagi et d'effectuer la révélation par une technique appropriée Un procédé de détermination particulièrement préféré consiste à effectuer une méthode sandwich en un temps, avec l'anticorps DSM n sor2167immobilisé et un anticorps complémentaire couplé à une enzyme, telle que la peroxydase, soit directement soit par l'intermédiaire du couple biotine/avidine, de façon connue en soi; la révélation est effectuée, comme habituellement, par action de l'enzyme sur un substrat chromo gène. Dans ce qui suit on décrit un exemple du procédé de détermination de l'AT III dans le plasma de sujets traités avec une héparine de bas poids moléculaire, précédée de la description de l'obtention d'anticorps monoclonaux conformes à l'invention. Exemple 1 - Obtention des anticorps monoclonaux 1. Immunisation des animaux On administre par voie intrapéritoneale à quatre souris balb/c une dose journalière de 20 pg par souris du pentasaccharide A pendant 5 jours ainsi que le second jour par voie sous-cutanée, 20 pg d'AT III humaine en présence d'adjuvant complet de Freund. Un rappel selon le même protocole est effectué un mois plus tard et quelques jours après on sélectionne la souris dont le sérum donne la réponse immunologique la plus forte vis à vis de l'AT III en présence ou non du pentasaccharide A. La sélection des souris est effectuée par un immunoessai classique de type ELISA dans des cupules sur les parois desquelles a été fixé un anticorps anti-Ig de souris. Le sérum à tester y est mis à incuber puis après lavage, une solution d'AT III humaine à 1 pg/ml dans un tampon phosphate salin (PBS) contenant 0,1 z de Tween R 20 ou la même solution contenant en outre 1 pg/ml du pentasaccharide sont introduits. Après incubation deux heures à température ambiante puis un lavage, on introduit une solution aqueuse contenant 0,5 pg/ml d'anticorps polyclonal anti-AT III, directement couplé à la peroxydase et après 30 minutes d'incubation, on révèle de façon classique. La sélection des souris peut aussi être effectuée de la façon suivante avec l'AT III adsorbée : 100 ul de solution à 10 pg/ml d'AT III dans un tampon PBS contenant ou non 10 pg/ml de pentasaccharide A sont incubés dans les puits d'une plaque de microtitration convenable, pendant une nuit à 4"C ou 1 heure à 37"C, pour réaliser de façon connue l'adsorption de l'AT III sur les parois; après lavage des puits, 100 pl de sérum dilué de 1000 à 10000 fois dans du tampon phosphate y sont incubés et après lavage, un anticorps anti-IgG murin conjugué à une enzyme est introduit, puis révélé de façon habituelle. La souris dont le sérum avait le meilleur titre a été choisie. 2. Hybridation lymphocytaire La fusion est réalisée par action du polyéthylène glycol, avec des cellules myélomateuses de souris, de la lignée P3-X63-Ag-8653 décrite dans J. Immunol. Methods 123 1548-1550 (1979) et des cellules spléniques de la souris sélectionnée. Les hybridomes sont cultivés sur les milieux habituels à base de RPMI, commercialisés par Gibco, contenant du sérum de veau foetal, de l'hypoxanthine, de la thymidine et de l'aminoptérine puis sélectionnés en appliquant les mêmes méthodes que pour la caractérisation des sérums de souris. Les hybridomes sélectionnés sont ensuite clonés par dilution limite à partir d'une dilution à 50 cellules par ml, à raison de 100 ul par puits d'une plaque de clonage. 3.Etude de l'affinité des anticorps pour l'AT III et 1'AT III activée. On utilise un appareil BIAcore R dont le signal exprimé en unités de résonance, est une fonction linéaire de la quantité de protéines fixée sur la surface du biocapteur entre 1 pg/mm2 et 30 ng/mm2 pour des protéines de masse moléculaire comprise entre 25000 et 150000 environ. On immobilise sur la surface sensible par liaison covalente à l'hydrogel qui la recouvre, selon la méthode préconisée par le fabricant, un anticorps de lapin anti immunoglobuline de souris sur lequel les anticorps à étudier sont immunofixés à partir d'une solution à 100 pg/ml dans un tampon phosphate 10 mM contenant 150 mM de NaCl et 5mM d'EDTA, pH 7,4; on note les signaux obtenus en faisant circuler du plasma humain normal dilué avec le tampon, de façon qu'il contienne environ 0,52 WM d'AT III et le même plasma dilué contenant l'un des glycosaminoglycanes sulfatés à une concentration de 52 WM. Le tableau I donne les mesures relevées pour 12 surnageants d'hybridomes avec une héparine de bas poids moléculaire, la FraxiparineR, classés en quatre groupes; les anticorps du groupe 1 ne reconnaissent pratiquement pas l'AT III native ou activée en solution; ceux du groupe 2 reconnaissent de la même façon l'AT III native et activée et ne répondent pas à l'invention; les anticorps du groupe 3 reconnaissent mieux l'AT III native que l'AT III activée et ne répondent pas à l'invention, par contre les anticorps du groupe 4 reconnaissent mieux l'AT III activée par l'héparine de bas poids moléculaire et peuvent être utilisés pour effectuer le procédé de l'invention pour la détermination de l'AT III activée; leurs anticorps complémentaires seront sélectionnés parmi ceux du Groupe 1. Tableau I Anticorps Signal AT III AT III activée* Groupe S Rat 01 17 23 1 S Rat 02 67 60 1 S Rat 03 70 56 1 S Rat 04 115 120 2 S Rat 05 548 336 3 S Rat 06 465 260 3 S Rat 07 404 123 3 S Rat 08 367 207 3 S Rat 09 ! 395 121 3 S Rat 10 382 123 3 S Rat 11 208 297 4 S Rat 12 346 421 4 * rapport molaire activateur/ATIII = 100 On a aussi dans les mêmes conditions mesuré les signaux obtenus avec les anticorps S Rat 11 et S Rat 12 pour l'AT III en présence de différents glycosaminoglycanes sulfatés; les résultats figurent dans le tableau 2 TABLEAU II Activateur Signal (AT III activée*)-signal(AT III) Ac S Rat 11 Ac S Rat 12 Héparine 236 121 Fraxiparine 160 121 Pentasaccharide 29 86 * rapport molaire activateur/AT III = 10 On constate qu'il serait préférable de ne pas utiliser l'anticorps S Rat 11 pour une étude de l'activation in vivo de l'AT III par le pentasaccharide A tandis qu'il conviendrait lors d'une activation par l'héparine. Lorsque l'on désire appliquer le procédé selon l'invention dans le cas d'un activateur quelconque, on pourra choisir l'anticorps S Rat 12. 4.Sélection d'un anticorps complémentaire. Cet anticorps est recherché parmi ceux qui donnent des signaux faible au BIAcoreR, et reconnaissent l'AT III dénaturé en solution. De l'AT III purifiée, commerciale, est dénaturée par un traitement avec du chlorhydrate de guanidine : on laisse incuber 18 heures à + 4" C une solution de tampon phosphate 10 mM contenant 500 pg/ml d'AT III, du NaCl 150 mM, de la guanidine 0,9 M, à pH 7,4 et laisse incuber 18 heures à + 4" C; la solution obtenue est dialysée contre le tampon phosphate 10 mM contenant du NaCl 150 mM, pH 7,4 pour obtenir une solution d'AT III dénaturée à 500 pg/ml. La sélection est effectuée en utilisant les résultats d'un immunoessai en phase solide : les anticorps à tester sont adsorbés dans les puits d'une microplaque par contact pendant 18 heures à + 40C d'une solution d'anticorps à 10 pg/ml dans du tampon phosphate salin; les puits sont lavés et 100 ul d'une solution d'AT III native ou dénaturée à 10 pg/ml dans un tampon phosphate 10 mM contenant du NaCl 150 mM, de l'EDTA 5mM à pH 7,4 sont introduits; après une heure d'incubation à température ambiante et lavage, on met dans les puits 0,05 ug d'un anticorps polyclonal anti AT III couplé à la peroxydase, en solution à 0,5 pg/ml. Après une heure d'incubation et des lavages, on révèle par addition de H2O2 et d'ortho-phénylènediamine. Le rapport des absorptions de la lumière vers 490 nm pour l'essai avec 1'AT III native par rapport à celui avec l'AT III dénaturée est inférieur à 0,1 pour l'anticorps S Rat 02 alors qu'il est supérieur à 0,4 pour les anticorps S Rat 01 et S Rat 03; ces derniers ne font donc pas partie de l'invention. L'anticorps S Rat 02 a été déposé à la collection DSM sous le ne.... Exemple 2 - Obtention d'une courbe d'étalonnage pour le procédé d'immunodétermination de 1'AT III activée par une héparine de bas poids moléculaire. On introduit dans les puits d'une plaque de microtitration 100 pl d'une solution à 10 pg/ml de l'anticorps S Rat 02 en solution dans un tampon phosphate 10 mM, pH7,4 contenant NaCl 150 mM et EDTA 5 mM. Après une incubation de 18 heures à + 40C et des lavages avec la solution tamponnée, on introduit 50 ul d'une solution à 0,5 mg/ml diluée au 1/40000 de l'anticorps S Rat 12, conjugué à la peroxydase et 50 u1 d'une solution de référence contenant du plasma normal et l'héparine de bas poids moléculaire (Fraxiparine) et on laisse incuber deux heures à température ambiante avant de laver et d'effectuer la révélation par addition d'un substrat chromogène de l'enzyme et de H202. L'absorption lumineuse est déterminée vers 490 nm. La solution de référence est obtenue en diluant 10 fois dans un tampon phosphate la solution, résultant de l'incubation au moins 2 heures, à température ambiante, d'un mélange de 800 pl du tampon phosphate précédent avec 100 pl de plasma normal dont la concentration en AT III est estimée voisine de 2,6 WM, et 100 pl d'une solution de Fraxiparine contenant selon les cas de 0,26 WM à 260 WM d'activateur. L'anticorps est conjugué à la peroxydase selon une méthode bien connue, qui consiste à faire réagir l'anticorps et la peroxydase activée par traitement au periodate de sodium avant de stabiliser le composé obtenu par traitement avec du borohydrure de sodium selon la méthode bien connue de Nakane. La figure 1 donne en coordonnées semi-logarithmiques, en ordonnée l'absorption lumineuse à 490 nm et en abscisse les concentrations de l'activateur, exprimées en WM de Fraxiparine dans les 100 pl introduits dans le milieu. Exemple 3 - Immunodosage dans le plasma d d'un sujet traité par la Fraxiparine. On administre à des volontaires sains par voie sous cutanée, après un premier prélèvement de sang destiné à déterminer leur concentration plasmatique en AT III native, 35000 unités de Fraxiparine; on leur prélève ensuite 1 ml de sang toutes les 1/2 heures pendant les 5 premières heures puis après 6, 8, 12, 18, 24, 30, 36 et 48 heures. On détermine sur chaque prélèvement la concentration du plasma en AT III activée par la méthode selon l'invention décrite dans l'exemple 2. Sur la figure n 2 on a représenté l'absorption lumineuse mesurée en fonction du temps. Exemple 4 - Immunodosage de l'AT III activée in vitro avant et après traitement à l'héparinase. Une solution à 2,7 WM d'AT III purifiée dans un tampon phosphate 10 mM contenant NaCl 150 mM, EDTA 5 mM, de pH 7,4 est incubée pendant deux heures à température ambiante, ainsi que la même solution contenant de l'héparine à la même concentration que l'AT III; ces solutions sont ensuite diluées 100 fois dans le même tampon et incubées pendant une heure à température ambiante avec de l'héparinase; cette réaction est effectuée en introduisant 0,5 ml de solution diluée dans un flacon de 1000 UI d'héparinase Hepzyme co comnercialisé par Baxter sous la référence B 4240-10, (héparinase EC 4.2.2.7.) On effectue l'immunodosage selon le procédé de l'invention déjà décrit à l'exemple 2 avec de l'anticorps S RAt 02 immobilisé et l'anticorps S Rat 12 couplé à la biotine par action de la N-hydroxysuccinimidobiotine, à la concentration de 1 pg/ml. La révélation est alors effectuée en ajoutant 50 pl d'une solution d'avidine couplée à la peroxydase, commercialisée par Pierce sous la référence 29994 et diluée 500 fois dans le tampon phosphate; après 15 minutes d'incubation, les cupules de la plaque sont lavées 4 fois et l'activité de la peroxydase résiduelle est mesurée comme à l'exemple 2. La densité optique des deux échantillons sans héparine est très faible, voisine de 0,1 tandis que l'échantillon contenant de l'héparine à une densité optique voisine de 2, qui après traitement à l'héparinase n'est plus que de 0,5. Revendications 1. Procédé de détermination de l'antithrombine III activée par un glycosaminoglycane sulfaté dont l'effet in vivo sur l'AT III est analogue à celui de l'héparine, par un immunodosage de type sandwich en phase solide, caractérisé en ce qu'on met en oeuvre - un anticorps monoclonal qui reconnait en solution moins efficacement, l'AT III que l'AT III activée par l'un des oligosaccharides sulfatés, ayant une activité sur l'AT III analogue à celle de l'héparine,et - un anticorps monoclonal qui ne reconnait pratiquement pas 1'AT III native en solution et 1'AT III activée par l'un des dits oligosaccharides en solution mais qui reconnait l'AT III dénaturé. 2. Procédé selon la revendication 1 caractérisé en ce que les deux anticorps sont mis simultanément en présence de l'antigène. 3. Procédé selon l'une des revendications précédentes caractérisé en ce qu'il est réalisé dans un milieu ne contenant pas d'ions calcium libres. 4. Procédé selon l'une des revendications précédentes caractérisé en ce que le milieu comprend un complexant des ions calcium. 5. Procédé selon l'une des revendications précédentes caractérisé en ce que l'anticorps qui reconnait l'AT III dénaturé est celui secrété par l'hybridome déposé à la collection DSM sous le NOACC 2167. 6. Procédé selon l'une des revendications précédentes caractérisé en ce que les glycosaminoglycanes sulfatés sont choisis parmi 1'héparine naturelle, les héparines de bas poids moléculaires et les oligosaccharides sulfatés se fixant sur l'AT III comme l'héparine. 7. Procédé selon la revendication 8 caractérisé en ce que l'oligosaccharide est le pentasaccharide de formule 8. Anticorps monoclonal qui reconnait mieux l'AT III activée par un glycosaminoglycane sulfaté, dont l'effet in vivo sur l'AT III est analogue à celui de l'héparine, que l'AT III, en solution. 9. Anticorps monoclonal selon la revendication 10 caractérisé en ce que le glycosaminoglycane sulfaté est le pentasaccharide de formule 10. Anticorps monoclonal reconnaissant l'AT III dénaturée, sans pratiquement reconnaitre l'AT III et l'AT III activée par un glycosaminoglycane sulfaté, dont l'effet in vivo sur l'AT III est analogue à celui de l'héparine. 11. Anticorps monoclonal selon la revendication 10 secrété par l'hybridome déposé à la collection DSM sous le N"ACC 2167. 12. Procédé d'obtention d'un anticorps monoclonal selon l'une des revendications 8 à 11, caractérisé en ce qu'on immunise les animaux avec l'antithrombine III humaine et un oligosaccharide sulfaté dont l'effet in vivo sur 1'AT III est analogue à celui de l'héparine et que l'on sélectionne les hybridomes qui secrètent des anticorps présentant les propriétés immunologiques recherchées. 13. Procédé selon la revendication 14 caractérisé en ce que l'oligosaccharide sulfaté est le pentasaccharide de formule 14. Procédé selon l'une des revendications 12 et 13 pour l'isolement d'anticorps selon les revendications 8 à 11, caractérisé en ce que la sélection des hybridomes convenables est effectuée à l'aide d'un appareil de mesure des affinités immunologiques. 15. Procédé selon l'une des revendications 12 et 13 caractérisé en ce que la sélection est effectuée avec un appareil qui détermine la vitesse de fixation de macromolécules sur une surface en mesurant la réflexion d'un rayon lumineux polarisé et mettant en jeu le phénomène de résonance plasmonique de surface. 16. Procédé selon l'une des revendications 12 à 15 caractérisé en ce qu'une présélection des hybridomes secrétant des anticorps selon les revendications 8 à 11 est effectuée avant leur clonage par dilution limite, par un immunoessai avec un anticorps polyclonal anti-AT III. 17. Procédé selon l'une des revendications 12 et 13, caractérisé en ce que la sélection des hybridomes convenables est effectuée par un procédé selon l'une des revendications 1 à 7 avec un anticorps connu complémentaire de celui recherché.