Brevet FR2705686A1 — publié le 19941202

- 1 - Nouveaux adénovirus défectifs et lignées de complémentation correspondantes L'invention a pour objet de nouveaux adénovirus défectifs permettant le transfert et l'expression de gènes d'intérêt dans une cellule ou un organisme eucaryote hôte ainsi que de nouvelles lignées de complémentation 2 0 complémentant en trans les fonctions virales essentielles qui ont été délétées du génome de ces adénovirus recombinants. L'invention présente un intérêt tout particulier pour des perspectives de thérapie génique, notamment chez l'homme. 2 5 Les adénovirus sont des virus à ADN qui présentent un large spectre d'hôte. Ils ont été mis en évidence dans de nombreuses espèces animales et de nombreux types cellulaires. Il existe plusieurs sérotypes qui diffèrent notamment au niveau de la séquence de leurs génomes. La plupart des adénovirus humains sont peu pathogènes et ne produisent généralement que 3 0 des symptômes bénins. L'adénovirus pénètre dans la cellule hôte permissive par l'intermédiaire d'un récepteur spécifique, puis il est internalisé et passe dans des endosomes. Leur acidification contribue à un changement de conformation du virus et à sa sortie dans le cytoplasme. Puis, l'ADN viral associé à certaines protéines virales nécessaires aux premières étapes du cycle réplicatif, pénètre dans le -2- noyau des cellules infectées o sa transcription est initiée par des enzymes cellulaires. La réplication de l'ADN adénoviral a lieu dans le noyau des cellules infectées et ne nécessite pas la réplication cellulaire. L'assemblage des nouveaux virions prend également place dans le noyau. Dans un premier temps, les protéines virales s'assemblent de manière à former des capsides vides de structure icosaedrique, dans lesquelles l'ADN adénoviral est ensuite encapsidé. Les particules virales ou virions sont libérés des cellules infectées par bourgeonnement et sont susceptibles d'infecter d'autres cellules permissives. Le cycle infectieux de l'adénovirus s'effectue en 2 étapes: la phase précoce qui précède l'initiation de la réplication du génome adénoviral et qui permet la production des protéines régulatrices intervenant au niveau de la réplication et de la transcription de l'ADN viral, et la phase tardive qui conduit à la synthèse des protéines structurales. D'une manière générale, le génome adénoviral est constitué d'une molécule d'ADN linéaire, bicaténaire et d'environ 36kb de long qui contient les séquences codant pour plus de 30 protéines. A chacune de ses extrémités, est présente une courte séquence de 100 à 150 nucléotides selon les sérotypes, inversée et désignée ITR (Inverted Terminal Repeat). Les ITRs sont impliqués dans la réplication du génome adénoviral et participent également à l'encapsidation. Cependant, la région d'encapsidation, d'environ 300 nucléotides proprement dite, est située à l'extrémité 5' du génome juste après l'ITR 5'. Les gènes précoces sont répartis en 4 régions qui sont dispersées dans le génome adénoviral, désignées E1 à E4 (E pour "Early" signifiant précoce en anglais). Les régions précoces comprennent au moins six unités transcriptionnelles qui possèdent leurs propres promoteurs. L'expression des gènes précoces est elle même régulée, certains gènes étant exprimés avant d'autres. Trois régions, respectivement El, E2 et E4, sont essentielles à la -3- replication virale. Ainsi, si un adénovirus est défectif pour l'une de ces fonctions, c'est à dire si il ne peut pas produire au moins une protéine codée par l'une de ces régions, celle-ci devra lui être fournie en trans. La région précoce E1 est située à l'extrémité 5' du génome adénoviral et contient 2 unités de transcription virales, respectivement E1A et E1B. Cette région code pour des protéines qui interviennent très précocement dans le cycle viral et sont essentielles à l'expression de presque tous les autres gènes de l'adénovirus. En particulier, l'unité de transcription E1A code pour une protéine trans-activatrice de la transcription des autres gènes viraux, qui induit la transcription à partir des promoteurs des régions E1B, E2A, E2B et E4. Les produits de la région E2, laquelle comprend également deux unités de transcription E2A et E2B, sont directement impliqués dans la réplication de l'ADN viral. Cette région gouverne notamment la synthèse d'une protéine de 72kDa, qui présente une forte affinité pour l'ADN simple brin et d'une ADN polymérase. 2 o La région E3 n'est pas essentielle à la réplication du virus. Elle code pour au moins six protéines qui seraient responsables de l'inhibition de la réponse immune de l'hôte vis à vis d'une infection par adénovirus. En particulier, la glycoprotéine gpl9kDa empêcherait la réponse CTIL, responsable de la cytolyse des cellules infectées par les cellules T cytotoxiques de l'hôte. La région E4 est située à l'extrémité 3' du génome adénoviral. Elle code pour de nombreux polypeptides qui sont impliqués dans l'expression des gènes tardifs, la stabilité des messagers (ARNm) tardifs, le passage de la phase précoce à la phase tardive ainsi que l'inhibition de la synthèse protéique cellulaire. Une fois la réplication de i'ADN viral initiée, la transcription des gènes tardifs débute. Ceux-ci occupent la majorité du génome adénoviral et recouvrent en partie les unités de transcription des gènes précoces. Mais ils sont transcrits à partir de promoteurs différents et selon un mode d'épissage alternatif, de sorte que les mêmes séquences codantes sont utilisées à des fins -4- différentes. La plupart des gènes tardifs sont transcrits à partir du promoteur majeur tardif MLP (Major Late Promoter). Ce promoteur permet la synthèse d'un long transcrit primaire qui est ensuite maturé en une vingtaine d'ARN messagers (ARNm) à partir desquels sont produites les protéines capsidaires du virion. Seul le gène codant pour la protéine structurale IX composant la capside, comprend son propre promoteur. Ce gène est situé à l'extrémité 5' du génome adénoviral et recouvre la région E1B à l'extrémité 3' de la région El. L'unité transcriptionnelle de la protéine IX utilise le même signal de terminaison de la transcription que 'unité transcriptionnelle E1B. Un certain nombre d'adénovirus sont maintenant bien caractérisés génétiquement et biochimiquement. Tel est le cas de l'adénovirus humain de type 5 (AdS) dont la séquence est divulguée dans la banque de donnée Genebank sous la référence M73260. Les différents gènes ont pu être localisés précisément sur le génome adénoviral, ainsi que la région d'encapsidation (Hearing et al., 1987, J. Virol., 61, 2555-2558). Cette région chevauche en partie la région régulatrice de l'unité de transcription E1A. I1 ressort de ce qui précède que les adénovirus possèdent des caractéristiques 2 o intéressantes qui font d'eux des vecteurs de choix pour le transfert de gènes d'intérêt. De nombreux adénovirus recombinants sont décrits dans la littérature (Rosenfeld et al., 1991, Science, 252, 431-434; Rosenfeld et al., 1992, Cell, 68, 143-155). D'une manière générale, ils dérivent de l'Ad5 et sont défectifs pour la fonction El, afin d'éviter leur dissémination dans l'environnement et l'organisme h6te. En outre, la région E3 non-essentielle peut également être délétée. Les séquences exogènes sont intégrées à la place de la région E1 ou E3. Ainsi, ces adénovirus défectifs ne peuvent être propagés que dans une lignée cellulaire complémentant en trans la fonction E1 essentielle à la réplication virale. A l'heure actuelle, la seule lignée de complémentation utilisable est la lignée de rein embryonnaire 293 (Graham et al., 1977, J. Gen. Virol., 36, 59- 72), qui résulte de l'intégration dans ses chromosomes, d'un fragment du génome de l'Ad5 comprenant notamment l'extrémité 5' du génome viral; de 3 5 sorte que la lignée 293 complémente les adénovirus défectifs pour la fonction El. Les cellules 293 contiennent des séquences qui se trouvent aussi dans l'adénovirus recombinant défectif, comme 1'ITR 5', la région d'encapsidation et la partie en 3' de la région E1B. La faisabilité du transfert de gènes en utilisant des adénovirus est maintenant établie. Mais, la question de leur innocuité reste posée. En effet, ils sont capables de transformer certaines lignées cellulaires en culture, ce qui reflète le pouvoir potentiellement oncogène de certains des produits d'expression du génome adénoviral, essentiellement de la région El et probablement E4. De plus, la probabilité de recombinaison génétique entre un adénovirus défectif de l'art antérieur, notamment un adénovirus recombinant, et soit un adénovirus naturel sauvage (issu d'une contamination accidentelle ou d'une infection opportuniste d'un organisme hôte), soit un fragment de génome adénoviral intégré dans la lignée de complémentation 293 n'est pas négligeable. En effet, il suffit d'un événement de recombinaison pour restaurer la fonction El et générer un adénovirus recombinant non- défectif capable de se disséminer dans l'environnement. Il est aussi envisageable qu'un adénovirus naturel sauvage co-infectant la même cellule qu'un adénovirus défectif puisse complémenter ce dernier pour la fonction El provoquant une co-dissémination des deux virus. Enfin, certains types de 2 o cellules eucaryotes produisent des protéines présentant une activité ElA-like également susceptibles de complémenter partiellement les adénovirus défectifs qui les infectent. 1l est donc souhaitable de disposer d'adénovirus performants présentant le minimum de risque, en vue de leur utilisation en thérapie génique pour corriger in vivo des défauts génétiques graves et traiter certaines maladies pour lesquelles on ne dispose pas d'approche thérapeutique efficace. C'est de leur obtention que dépend le succès de la thérapie génique appliquée à l'homme. De plus, il existe des interrogations à propos de l'obtention de la lignée 293. Ces interrogations peuvent être de nature à compromettre l'acceptabilité des produits destinés à un usage qui en seront dérivés, par exemple un adénovirus recombinant. Il serait utile de disposer de lignées de complémentation dont l'origine et l'histoire sont exactement connues. -6- On a maintenant trouvé (1) de nouveaux adénovirus défectifs délétés de certaines régions spécifiques du génome adénoviral et plus adaptés au transfert de séquence nucléotidique exogène in vivo et (2) de nouvelles lignées de complémentation caractérisées, acceptables d'un point de vue pharmaceutique et donc offrant toutes les caractéristiques de sécurité requises pour la production de produits destinés à un usage humain. L'intérêt de ces nouveaux adénovirus est qu'ils présentent une capacité de clonage accrue permettant l'insertion d'un ou plusieurs gènes d'intérêt de grande taille et une sécurité d'emploi maximale. Ces mutations délétères rendent ces adénovirus incapables de réplication autonome et de transformation cellulaire et ceci sans altérer leur capacité à transférer et exprimer un gène d'intérêt. C'est pourquoi la présente invention a pour objet un adénovirus défectif pour la réplication sélectionné parmi: (a) un adénovirus dérivé d'un adénovirus naturel en ce qu'il est dépourvu: (i) d'au moins les séquences codantes de la région E1B, et/ou (ii) d'au moins une partie de la région E4; (b) un adénovirus dérivé d'un adénovirus naturel autre qu'un adénovirus humain de type 5, en ce qu'il est dépourvu d'une partie de la région d'encapsidation. La présente invention a également pour objet un adénovirus défectif pour la 3 0 réplication sélectionné parmi: (a) un adénovirus dérivé d'un adénovirus naturel en ce qu'il est dépourvu: (i) d'au moins les séquences codantes de la région E1B, et/ou -7- (ii) d'au moins une partie de la région E4; (b) un adénovirus dérivé d'un adénovirus humain de type 5, en ce qu'il est dépourvu: (i) d'une partie de la région d'encapsidation allant du nucléotide 270 au nucléotide 346 de la séquence telle que divulguée dans la banque de donnée Genebank sous la référence M73260, ou o10 (ii) d'une partie de la région d'encapsidation allant du nucléotide 184 au nucléotide 273 de la séquence telle que divulguée dans la banque de donnée Genebank sous la référence M73260 Au sens de la présente invention, l'expression "adénovirus défectif' se réfère à un adénovirus incapable de réplication autonome dans une cellule hôte qui est néanmoins infectieux, c'est à dire qu'il a la capacité de délivrer son génome dans une cellule. Un adénovirus selon l'invention est, de préférence 2 0 dépourvu d'une partie de la région E1A (autre que la région d'encapsidation) comme les adénovirus défectifs de l'art antérieur, et comprend une délétion dans la région d'encapsidation et/ou d'au moins les séquences codantes de la région E1B et/ou de tout ou partie de la région E4. Au sens de la présente invention, l'expression "délétion" se réfère à la suppression d'au moins un nucléotide dans la région ciblée. Une délétion de la région E1B permettra de réduire ou supprimer les séquences communes entre un adénovirus défectif selon l'invention et le 3 o fragment de génome adénoviral intégré dans une lignée de complémentation, par exemple la lignée 293. De plus, cette délétion élimine du génome d'un adénovirus selon l'invention des séquences dont les produits d'expression sont potentiellement oncogènes, du moins en conjonction avec les produits d'expression de la région E1A. Selon un mode préféré la délétion de la région E1B concerne le promoteur et les séquences codant par les produits -8- d'expression de la région E1B et n'inclut pas la totalité du signal de terminaison de la transcription. Une délétion de tout ou partie de la région E4 permettra à la fois d'accroître les possibilités de clonage de gènes d'intérêt et comme précédemment de réduire ou supprimer des séquences codant pour des produits potentiellement oncogènes. Une délétion d'une partie de la région d'encapsidation permettra de réduire o10 notablement la probabilité de dissémination incontrôlée d'un adénovirus défectif selon l'invention, lorsque ce dernier est en présence d'un adénovirus sauvage. Une telle délétion permet d'affecter les fonctions d'encapsidation d'un adénovirus selon l'invention; de telle sorte que même en cas de complémentation de la fonction défective de celui-ci par l'adénovirus sauvage, son génome ne puisse être encapsidé efficacement par rapport au génome de l'adénovirus sauvage compétiteur. Les délétions de la région d'encapsidation sera choisies en fonction de 2 critères: une capacité réduite à être encapsidé mais simultanément une efficacité résiduelle compatible avec une production industrielle. Un adénovirus défectif selon l'invention présentera une efficacité d'encapsidation réduite d'un facteur 2 à 50, avantageusement 3 à 20 et de préférence 5 à 10 par rapport à un adénovirus sauvage. Un adénovirus défectif selon l'invention, est avantageusement choisi parmi: un adénovirus qui ne comporte qu'une seule des 3 délétions ci- dessus énoncées, à savoir un adénovirus défectif délété de la région E1B ou de tout ou partie de la région E4 ou d'une partie de la région d'encapsidation; un adénovirus qui comporte deux délétions selon n'importe quelle combinaison; et un adénovirus qui comporte l'ensemble des délétions. -9- Selon un mode avantageux, un adénovirus défectif selon l'invention est dérivé d'un adénovirus humain de type 5 et comporte: (i) la délétion d'au moins les séquences codantes de la région E1B; ladite délétion se terminant au nucléotide 4047 de la séquence telle que divulguée dans la banque de donnée Genebank sous la référence M73260; et/ou (ii) la délétion de tout ou partie de la région E4; ladite région E4 étant située entre les nucléotides 32800 et 35826 de la séquence divulguée dans la banque de donnée Genebank sous la référence M73260; et/ou (iii) la délétion d'une partie de la région d'encapsidation: allant du nucléotide 270 au nucléotide 346 de la séquence telle que divulguée dans la banque de donnée Genebank sous la référence M73260, ou - allant du nucléotide 184 au nucléotide 273 de la séquence telle que divulguée dans la banque de donnée Genebank sous la référence M73260 Comme indiqué précédemment, un adénovirus selon l'invention est de préférence défectif pour la fonction E1A, donc dépourvu d'au moins une partie de la région E1A. En outre, un adénovirus selon l'invention peut être dépourvu de tout ou partie de la région E3. Il peut s'agir d'une délétion de lpb qui détruit le cadre de lecture d'un gène, d'une délétion intermédiaire d'un ou plusieurs gènes de la région E3 ou de l'ensemble de la région E3. Selon un mode particulièrement avantageux, un adénovirus selon l'invention est délété d'une partie seulement de la région E3 et préférentiellement de la partie qui ne comprend pas les séquences codant pour la protéine gpl9kDa. La présence de la séquence codant pour la protéine gpl9kDa dans le génome -10- d'un adénovirus défectif selon l'invention, permettra aux cellules infectées d'échapper à l'immunosurveillance de l'hôte; un critère important lorsque le protocole thérapeutique nécessite plusieurs administrations répétées. On choisira, de préférence, de placer les séquences codant pour la gpl9kDa sous le contrôle d'éléments appropriés permettant l'expression de la gpl9kDa; à savoir les éléments nécessaires à la transcription desdites séquences en ARNm et la traduction de ce dernier en protéine. Ces éléments comprennent en particulier un promoteur. De tels promoteurs sont bien connus de l'homme de l'art et sont insérés en amont de ladite séquence codante par les techniques conventionnelles du génie génétique. Le promoteur retenu sera, de préférence, un promoteur constitutif non activable par un des produits d'expression de la région E1A. A titre d'exemple, on peut citer le promoteur du gène HMG (Hydroxy-Methyl-Glutaryl coenzyme A réductase), le promoteur précoce du virus SV40 (Simian Virus 40), le LTR (Long Terminal Repeat) du RSV (Rous Sarcoma Virus) ou le promoteur d'un gène PGK (phospho-glycerate kinase) d'eucaryote supérieur. Par ailleurs, un adénovirus défectif selon l'invention peut être en outre dépourvu de tout ou partie de la région E2. Selon un mode particulièrement préféré, un adénovirus selon l'invention peut être dépourvu de l'ensemble des gènes codant pour les protéines précoces et tardives d'un adénovirus; la seule contrainte étant la présence sur la molécule d'ADN linéaire des ITR 5' et 3' et de tout ou partie de la région d'encapsidation. Le génome d'un tel adénovirus défectif selon l'invention, ne comprend que le minimum de séquence virale afin de limiter les risques de recombinaison, les risques d'oncogénécité et avoir une capacité de clonage maximale. On parlera alors d'un adénovirus défectif "minimum". I1 sera alors possible d'insérer dans un tel adénovirus jusqu'à 30kb de 3 o séquence nucléotidique exogène. Dans le cadre de la présente invention, un adénovirus défectif selon l'invention a pour objet le transfert et l'expression d'une séquence nucléotidique exogène dans une cellule hôte. C'est pourquoi, un adénovirus défectif selon l'invention, comprend avantageusement, une séquence nucléotidique exogène. Par "séquence nucléotidique exogène", on entend un -11- acide nucléique qui comprend des séquences codantes et des séquences régulatrices permettant l'expression desdites séquences codantes et dans lequel les séquences codantes sont des séquences qui ne sont normalement pas présentes dans le génome d'un adénovirus. Les séquences régulatrices peuvent être d'origine quelconque. La séquence nucléotidique exogène est introduite dans un adénovirus défectif selon l'invention par les techniques classiques du génie génétique. Une séquence nucléotidique exogène peut être constituée d'un ou plusieurs gènes d'intérêt et, de manière préférée d'intérêt thérapeutique. Dans le cadre de la présente invention, un gène d'intérêt peut coder soit pour un ARN anti-sens, soit pour un ARNm qui sera ensuite traduit en protéine d'intérêt. Un gène d'intérêt peut être de type génomique, de type ADN complémentaire (ADNc) ou de type mixte ou minigène, dans lequel au moins un intron est délété. Il peut coder pour une protéine mature, un précurseur d'une protéine mature, notamment un précurseur destiné à être secrété et comprenant de ce fait un peptide signal, une protéine chimérique provenant de la fusion de séquence d'origine diverse ou un mutant d'une protéine naturelle présentant des propriétés biologiques améliorées ou modifiées. Un tel mutant peut être obtenu par mutation, délétion, substitution et/ou addition d'un ou plusieurs nucléotide(s) du gène codant pour la protéine naturelle. Un gène d'intérêt peut être placé sous le contrôle d'éléments appropriés à son expression. Par "éléments appropriés à leur expression", on entend l'ensemble des éléments nécessaires à sa transcription en ARN (ARN anti- sens ou ARNm) et à la traduction d'un ARNm en protéine. Parmi les éléments nécessaires à la transcription, le promoteur revêt une importance particulière. D'une façon générale, on aura recours à un promoteur 3 o fonctionnel dans les cellules que l'on cherche à infecter avec un adénovirus défectif selon l'invention. Le promoteur retenu pourra être un promoteur constitutif ou un promoteur régulable. Il peut être isolé d'un gène d'une cellule eucaryote ou d'un virus et même d'un adénovirus, comme par exemple le promoteur MLP. Il peut être le promoteur naturel du gène d'intérêt en question. Il peut être modifié de manière à contenir des séquences régulatrices. A titre d'exemple, le ou les gène(s) d'intérêt -12- constituant la séquence nucléotidique exogène, seront placés sous le contrôle du promoteur des gènes d'immunoglobuline lorsque l'on cherche à cibler le transfert de la séquence nucléotidique exogène dans les cellules lymphocytaires. On peut également citer le promoteur du gène TK-HSV-1 (thymidine kinase du virus de l'herpès de type 1) qui est un promoteur constitutif permettant une expression dans un grand nombre de types cellulaires. Parmi les gènes d'intérêt utilisables dans le cadre de la présente invention, on peut citer: les gènes codant pour des cytokines, comme l'interféron alpha, l'interféron gamma, les interleukines; - les gènes codant pour des récepteurs membranaires, comme les récepteurs reconnus par des organismes pathogènes (virus, bactéries, ou parasites), de préférence par le virus VIH (Virus de l'Immunodéficience Humain); - les gènes codant pour des facteurs de coagulation, comme le facteur VIII et le facteur IX; - le gène codant pour la dystrophine; - le gène codant pour l'insuline; - les gènes codant pour des protéines participant directement ou indirectement aux canaux ioniques cellulaires, comme la protéine CFTR (Cystic Fibrosis Transmembrane Conductance 3 0 Regulator); les gènes codant pour des ARN anti-sens ou des protéines capables d'inhiber l'activité d'une protéine produite par un gène pathogène, présent dans le génome d'un organisme pathogène, ou par un gène cellulaire, dont l'expression est dérégulée, par exemple un oncogène; - 13 - les gènes codant pour une protéine inhibant une activité enzymatique, comme l'al antitrypsine ou un inhibiteur d'une protéase virale; - les gènes codant pour des variants de protéines pathogènes qui ont été mutées de façon à altérer leur fonction biologique, comme par exemple des variants trans-dominants de la protéine TAT du virus VIH capables de compétition avec la l0 protéine naturelle pour la liaison à la séquence cible, empêchant ainsi l'activation du VIH; - les gènes codant pour des épitopes antigéniques afin d'accroître l'immunité de la cellule hôte - les gènes codant pour les protéines de complexe majeur d'histocompatibilité des classes I et II, ainsi que les gènes codant pour les protéines inductrices de ces gènes; - les gènes codant pour des enzymes cellulaires ou produites par des organismes pathogènes; et - les gènes suicides. On peut citer plus particulièrement le gène suicide TK-HSV-1. L'enzyme TK virale présente une affinité nettement supérieure par rapport à l'enzyme TK cellulaire pour certains analogues de nucléosides (comme l'acyclovir ou le gancyclovir). Elle les convertit en molécules monophosphatées, elles-mêmes convertibles, par les enzymes cellulaires, en précurseurs de nucléotides, qui sont toxiques. Ces analogues de nucléotides sont incorporables dans les molécules d'ADN en voie de synthèse, donc principalement dans l'ADN des cellules en état de réplication. Cette incorporation permet de détruire spécifiquement les cellules en division comme les cellules cancéreuses. -14- Cette liste n'est pas Iimitative et d'autres gènes peuvent être utilisés dans le cadre de la présente invention. Par ailleurs, selon un autre mode de mise en oeuvre de l'invention, un adénovirus défectif selon l'invention peut en outre comprendre un gène non- thérapeutique codant pour une protéine trans-activatrice de la transcription. Bien entendu, on évitera le ou les gène(s) de la région E1A codant pour une protéine trans-activatrice, dont l'expression risquerait de rendre l'adénovirus non-défectif. On choisira, de préférence, le gène codant pour la protéine Gal4 de Saccharomyces cerevisiae. L'expression d'un tel gène dans un adénovirus selon l'invention, permettra sa propagation dans une nouvelle lignée de complémentation telle que celle décrite ci- après. Une telle lignée est plus sophistiquée et permet de pallier à d'éventuels problèmes de toxicité due à la production en continue des protéines adénovirales de complémentation. Le gène codant pour une protéine trans-activatrice de la transcription peut être placé, si nécessaire, sous le contrôle d'éléments appropriés à son expression; par exemple ceux qui permettent l'expression d'un gène d'intérêt. 2 0 Un adénovirus défectif selon la présente invention est dérivé d'un adénovirus naturel, avantageusement un adénovirus canin, aviaire ou humain, de préférence un adénovirus humain de type 2, 3, 4, 5 ou 7 et de manière tout à fait préférée un adénovirus humain de type 5. L'invention a également trait à une cellule eucaryote comprenant un adénovirus défectif selon l'invention. Ladite cellule est avantageusement une cellule de mammifère et de préférence une cellule humaine. Un adénovirus défectif selon l'invention peut, notammant, être préparé par passage dans une lignée de complémentation fournissant en trans les fonctions pour lesquelles un adénovirus selon l'invention est défectif. C'est pourquoi la présente invention concerne également une lignée de complémentation constituée par une lignée cellulaire comportant un élément de complémentation comprenant au moins une partie de la région El d'un adénovirus naturel et dépourvu de la séquence LIR 5'; l'élément de -15complémentation étant soit intégré dans le génome, soit inséré sur un vecteur. Dans le cadre de la présente invention, le terme "lignée de complémentation" se réfère à une lignée cellulaire capable de fournir entrans la ou les fonction(s) pour la(les)quelle(s) un adénovirus est défectif; en d'autres termes, de produire toutes les protéines nécessaires à la constitution d'une particule virale, éléments qu'un adénovirus défectif ne peut lui même produire. Une lignée de complémentation selon l'invention peut être dérivée soit d'une lignée cellulaire immortalisée, capable de se diviser indéfiniment, soit d'une lignée primaire. Conformément aux buts poursuivis par la présente invention, une lignée de complémentation selon l'invention est utile pour la propagation de n'importe quel adénovirus défectif et, en particulier, un adénovirus défectif selon l'invention. Ainsi, lorsqu'on utilisera le terme large "adénovirus défectif', il doit être entendu qu'il inclut également un adénovirus défectif selon l'invention. Une lignée de complémentation selon l'invention comporte un élément de complémentation. Par "élément de complémentation", on entend un acide nucléique comprenant un ou plusieurs gène(s), notamment isolé(s) d'un adénovirus naturel, dont l'expression permettra de fournir en trans la ou les protéine(s) adénovirale(s) correspondante(s) et complémenter la ou les fonction(s) pour lesquelles un adénovirus est défectif. L'élément de complémentation peut être inséré sur un vecteur, par exemple de type plasmidique ou viral ou de manière préférée, intégré dans le génome d'une lignée de complémentation selon l'invention. Les méthodes pour introduire un vecteur ou un acide nucléique dans une lignée cellulaire et intégrer ledit acide nucléique dans le génome d'une cellule constituent des techniques conventionnelles bien connues de l'homme de l'art. Ce dernier connaît également les différents vecteurs utilisables à de telles fins. L'élément de complémentation peut être introduit dans une lignée de complémentation selon l'invention, de façon préalable ou concomitante à un adénovirus défectif. Une lignée de complémentation selon l'invention est destinée à complémenter en trans un adénovirus défectif pour la fonction El, comme -16- par exemple les adénovirus défectifs de l'art antérieur ou un adénovirus défectif selon l'invention délété de la région E1B. Une telle lignée présente l'avantage de diminuer les risques de recombinaison puisque, contrairement à la lignée conventionnelle 293, l'élément de complémentation qu'elle comporte est dépourvu de l'ITR 5'. Par ailleurs, selon un autre mode de mise en oeuvre de l'invention, une lignée de complémentation selon l'invention peut comporter un élément de complémentation dépourvu, en outre, du promoteur de la région E1A; le promoteur E1A étant substitué par un promoteur non-adénoviral approprié. D'une manière générale, on choisira un promoteur fonctionnel dans la lignée cellulaire dont dérive ladite lignée de complémentation. Le promoteur approprié peut être isolé de n'importe quel gène viral, sauf adénoviral, ou eucaryote. I1 peut s'agir d'un promoteur constitutif. A titre d'exemple on peut citer les promoteurs du virus SV40, du gène TK-HSV-1 et du gène murin PGK. D'une manière alternative, le promoteur retenu peut être régulable et avantageusement, inductible par une protéine trans-activatrice de transcription. Il peut s'agir d'un promoteur isolé d'un gène naturellement inductible ou d'un promoteur quelconque modifié par l'addition de séquences d'activation ou UAS (Upstream Activating Sequence) répondant à ladite protéine trans- activatrice. De manière plus particulière, on utilisera un promoteur inductible par la protéine Gal4 de Saccharomyces cerevisiae et, de préférence, un promoteur dit "minimum" du gène TK-HSV-1 contenant uniquement les séquences d'initiation de la transcription, en amont duquel on a inséré au moins un UAS du gène GallO de Saccharomyces cerevisiae. Les UAS peuvent être synthétisés chimiquement ou isolés du gène GallO, selon les techniques classiques du génie génétique. Ainsi, un tel promoteur ne sera activé et n'induira l'expression des gènes codés par la région E1A placés sous son contrôle, qu'en présence de la protéine Gal4. De plus, le promoteur E1B est lui-même inductible par la protéine trans-activatrice codée par la région E1A. Ce mode de réalisation particulier de l'invention, évite la production d'une manière constitutive (éventuellement toxique) des protéines de complémentation de l'ensemble de la fonction El. Leur production n'est déclenchée qu'en présence, par exemple, d'un adénovirus -17- défectif selon l'invention exprimant la protéine Gal4. Une telle lignée peut également être utilisée pour préparer n'importe quel adénovirus défectif pour la fonction El, à la condition toutefois de fournir en trans la protéine Gal4. Les moyens de fournir en trans une protéine sont connus de l'homme du métier. Selon un mode avantageux, une lignée de complémentation selon l'invention comporte un élément de complémentation comprenant au moins une partie de la région El d'un adénovirus humain de type 5 sélectionnée parmi: (i) la région ou une région homologue allant du nucléotide 100 et se terminant au nucléotide 5297 de la séquence telle que divulguée dans la banque de donnée Genebank sous la référence M73260, et (ii) la région ou une région homologue allant du nucléotide 100 et se terminant au nucléotide 4034 de la séquence telle que divulguée dans la banque de donnée Genebank sous la référence M73260, et (iii) la région ou une région homologue allant du nucléotide 505 et se terminant au nucléotide 4034 de la séquence telle que divulguée dans la banque de donnée Genebank sous la référence M73260 et placée sous le contrôle des éléments nécessaires à l'expression de ladite région. Avantageusement, un élément de complémentation comprenant la région allant du nucléotide 100 et se terminant au nucléotide 4034 d'un adénovirus humain de type 5, contiendra, en outre, un signal de terminaison de la 3 o transcription, comme par exemple le signal de polyadénylation du virus SV40 (Simian Virus 40) ou du gène B-globine de lapin. Par ailleurs, la région allant du nucléotide 505 et se terminant au nucléotide 4034 d'un adénovirus humain de type 5 correspond à l'ensemble des séquences codantes de la région El mais ne comprend ni les séquences promotrices de la région E1A, ni le signal de terminaison de la transcription -18- de la région E1B. Ainsi, un élément de complémentation comportant cette région (505-4034) comprendra, en outre, les éléments appropriés permettant son expression. On insérera notamment en 5' de ladite région un promoteur non-adénoviral approprié, tel que décrit précédemment, et en 3' un signal de terminaison de la transcription, par exemple celui du gène B-globine de lapin. Une lignée de complémentation comportant un tel élément de complémentation constituera une lignée de complémentation "propre" dépourvue de la majorité des séquences communes avec un adénovirus défectif. Une lignée de complémentation selon l'invention peut comporter un élément de complémentation comprenant, en outre, au moins une partie de la région E4 d'un adénovirus naturel; et de préférence au moins une partie de la région E4 d'un adénovirus humain de type 5 (ladite région E4 allant du nucléotide 32800 et se terminant au nucléotide 35826 de la séquence telle que divulguée dans la banque de donnée Genebank sous la référence M73260). Dans le cadre de l'invention, la partie de la région E4 peut être placée, si 2 o nécessaire, sous le contrôle d'éléments appropriés permettant son expression. D'une manière alternative et préférée la partie de la région E4 incluse dans l'élément de complémentation comprend son propre promoteur, lequel est inductible par la protéine trans-activatrice de transcription codée par la région E1A. Une telle lignée de complémentation est destinée à la préparation d'un adénovirus défectif pour les fonctions E1 et E4, comme par exemple un adénovirus défectif selon l'invention délété de la région E1B et de tout ou partie de la région E4. De plus, dans le cadre du mode de réalisation particulier de l'invention selon lequel le promoteur de la région E1A est remplacé par un promoteur inductible par la protéine Gal4, une telle lignée de complémentation ne produira les protéines de complémentation pour les fonctions E1 et E4 qu'en présence d'un adénovirus défectif exprimant la protéine Gal4, évitant ainsi les problèmes de toxicité liés à la production en continue des protéines adénovirales. -19- Une lignée de complémentation selon l'invention peut comporter un élément de complémentation comprenant, en outre, une partie de la région E2 d'un adénovirus naturel. Une telle lignée permettra de complémenter en trans l'ensemble des fonctions essentielles à la replication d'un adénovirus et est donc particulièrement adaptée à la propagation d'un adénovirus défectif pour les fonctions El, E2 et E4, notamment un adénovirus défectif selon l'invention tel qu'un adénovirus minimum. Par ailleurs, une lignée de complémentation selon l'invention comporte un élément de complémentation comprenant l'ensemble du génome d'un adénovirus naturel, à l'exception de la région d'encapsidation et de i'ITR 5' dudit adénovirus et, de manière tout à fait préférée, la partie du génome d'un adénovirus humain de type 5 allant du nucléotide 505 et se terminant au nucléotide 35826 de la séquence telle que divulguée dans la banque de donnée Genebank sous la référence M73260. Aux fins de la présente invention, la partie du génome d'un adénovirus humain de type 5, allant du nucléotide 505 et se terminant au nucléotide 35826, peut être placée sous le contrôle d'un promoteur non-adénoviral approprié. Un tel promoteur est décrit précédemment et on préférera également un promoteur inductible par la protéine Gal4 de Saccharomyces cerevisae. Selon un mode préféré, une lignée de complémentation selon l'invention peut comporter un élément de complémentation comprenant, en outre, un gène codant pour un marqueur de sélection permettant la détection et l'isolement des cellules le comportant. Dans le contexte de la présente invention, il peut s'agir de n'importe quel gène codant pour un marqueur de sélection, ceux-ci étant généralement connus de l'homme de l'art, 3 0 avantageusement d'un gène de résistance à un antibiotique et de préférence du gène codant pour la puromycine acetyl-transférase (gène pac) conférant Ia résistance à la puromycine. Dans le cadre de la présente invention, le gène codant pour un marqueur de sélection peut, en outre, être placé sous le contrôle des éléments appropriés permettant son expression. Bien entendu, ces éléments comprennent un - 20 - promoteur quelconque. On peut placer ledit gène sous le contrôle d'un promoteur constitutif, notamment le promoteur précoce du virus SV40. Cependant, on préférera un promoteur inductible par la protéine trans- activatrice codée par la région ElA, en particulier le promoteur adénoviral E2A. Une telle combinaison introduira une pression de selection pour la maintenance d'un élément de complémentation comportant et exprimant la région E1A dans une lignée de complémentation selon l'invention. Aux fins de la présente invention, le promoteur retenu peut être modifié par délétion, mutation, substitution et/ou addition de nucléotides. Selon un mode de réalisation tout à fait préféré, une lignée de complémentation selon l'invention est constituée par une lignée cellulaire acceptable d'un point de vue pharmaceutique. Par "lignée cellulaire acceptable d'un point de vue pharmaceutique", on entend une lignée cellulaire caractérisée (dont on connait l'origine et l'histoire) et/ou ayant déjà été utilisée pour la production à grande échelle de produits destinés à un usage humain (constitution de lots pour des essais cliniques avancés ou de lots destinés à la vente). A cet égard, on peut mentionner les lignées de rein de singe vert d'Afrique Vero, de rein de hamster doré ou syrien BHK, humaine dérivée d'un carcinome de poumon A549, humaine pulmonaire MRC5, humaine pulmonaire WI38 et d'ovaire de hamster chinois CHO. L'invention concerne également un procédé de préparation d'un adénovirus défectif selon l'invention, selon lequel: on introduit ledit adénovirus défectif dans une lignée de complémentation selon l'invention, on cultive ladite lignée de complémentation selon des conditions appropriées pour permettre la production desdits adénovirus défectifs, et on récupère lesdits adénovirus défectifs dans le surnageant de culture de ladite lignée. -21- Dans le cadre de l'invention, un adénovirus selon l'invention peut d'une manière alternative être préparé selon les techniques conventionnelles connues de l'homme de l'art (Graham et Prevec, dans Methods in Molecular Biology, vol 7, 109-128, Ed: E.J. Murey, The Human Press Inc.). L'invention a également pour objet l'usage thérapeutique ou prophylactique d'un adénovirus défectif selon l'invention, d'une cellule eucaryote selon l'invention ou d'une lignée de complémentation selon l'invention. La présente invention est enfin relative à une composition pharmaceutique comprenant à titre d'agent thérapeutique ou prophylactique un adénovirus défectif selon l'invention, une cellule eucaryote selon l'invention ou une lignée de complémentation selon l'invention en association avec un support acceptable d'un point de vue pharmaceutique. La composition selon l'invention est en particulier destiné au traitement préventif ou curatif de maladies telles que: - des maladies génétiques, comme par exemple l'hémophilie, la 2 o mucoviscidose ou la myopathie, celle de Duchêne et Becker, - des cancers, comme par exemple ceux induits par des oncogènes ou des virus, - des maladies rétrovirales, comme par exemple le SIDA (syndrome de l'immunodéficience acquise résultant de l'infection par le VIH), et - des maladies virales récurrentes, comme par exemple les 3 0 infections virales provoquées par le virus de l'herpès. Une composition pharmaceutique selon l'invention peut être fabriquée de manière conventionnelle. En particulier, on associe une quantité thérapeutiquement efficace d'un agent thérapeutique ou prophylactique à un support tel qu'un diluant. Une composition selon l'invention peut être administrée par aérosol ou par n'importe quelle voie conventionnelle en -22 - usage dans le domaine de l'art, en particulier par voie orale, sous-cutanée, intramusculaire, intraveineuse, intrapéritonéale intrapulmonaire ou intra- trachéale. L'administration peut avoir lieu en dose unique ou répétée une ou plusieurs fois après un certain délai d'intervalle. La voie d'administration et le dosage appropriés varient en fonction de divers paramètres, par exemple, de l'individu traité ou de la maladie à traiter ou encore du ou des gène(s) d'intérêt à transférer. D'une manière générale, une composition pharmaceutique selon l'invention comprend une dose d'adénovirus selon l'invention comprise entre 104 et 1014, avantageusement 105 et 1013 et de préférence 106 et 101l. Une composition pharmaceutique peut comprendre en outre un adjuvant acceptable d'un point de vue pharmaceutique. L'invention s'étend également à une méthode de traitement selon laquelle on administre une quantité thérapeutiquement efficace d'un adénovirus défectif selon l'invention, une cellule eucaryote selon l'invention ou une lignée de complémentation selon l'invention à un patient ayant besoin d'un tel traitement. La présente invention est plus complètement décrite à l'aide des exemples suivants. EXEMPLES Les exemples suivants n'illustrent qu'un mode de réalisation de la présente invention. Les constructions décrites ci-dessous sont réalisées selon les techniques générales de génie génétique et de clonage moléculaire, détaillées dans Maniatis et al., (1989, Laboratory Manual, Cold Spring Harbor, Laboratory 3 o Press, Cold Spring Harbor, NY). L'ensemble des étapes de dclonage mettant en oeuvre des plasmides bactériens est réalisé par passage dans la souche Escherichia coli (E. coli) 5K, alors que celles qui mettent en oeuvre des vecteurs dérivés du phage M13 sont réalisées par passage dans E. coli NM 522. En ce qui concerne les étapes d'amplification par PCR, on applique le protocole tel que décrit dans PCR Protocols-A guide to methods and -23 - applications, (1990, edited by Innis, Gelfand, Sninsky and White, Academic Press Inc.). Les fragments insérées dans les différentes constructions décrites ciaprès, sont indiqués précisément selon leur position dans la séquence nucléotidique: du génome de l'Ad5 telle que divulguée dans la banque de données Genebank sous la référence M73260, du génome de l'adénovirus de type 2 (Ad2), telle que divulguée dans la banque de données Genebank sous la référence J01949, - du génome du virus SV40 telle que divulguée dans la banque de données Genebank sous la référence J02400, EXEMPLE 1: Construction d'un virus "atténué" comprenant une délétion d'une partie de la région d'encapsidation. 1. Construction d'un virus "atténué" comprenant une délétion du nucléotide 184 au nucléotide 273 de la région d'encapsidation a. Génération de la délétion On construit un vecteur comprenant l'ITR situé à l'extrémité 5' du génome de l'Ad5 (du nucléotide 1 au nucléotide 103), - la région d'encapsidation de l'Ad5 comprise entre les nucléotides 104 à 458 dans laquelle la portion allant du nucléotide 184 au nucléotide 273 est délétée et la thymine (T) en position 176 est modifiée en une cytosine (C) afin de créer un site de restrictionAatl, -24- une cassette d'expression d'un gène d'intérêt comprenant de 5' vers 3' le MLP de l'Ad2 (nucléotides 5779 à 6038), les sites de restriction KpnI-XbaI-HindII et BamHI, l'ADNc humain codant pour la protéine CFTR, (la composition en acides aminés correspond à la séquence publiée par Riordan et al, 1989, Science, 245, 1066-1073; à l'exception d'une valine à la place de la méthionine en position 470), les sites PstI, XhoI et SalI et enfin le signal de terminaison de la transcription du virus SV40 (nucléotides 2665 à 2538), le fragment du génome de l'Ad5 s'étendant du nucléotide 3329 au nucléotide 6241. Dans un premier temps, on clone entre les sites EcoRI et EcoRV du vecteur M13TG131 (Kieny et al., 1983, Gene, 26, 91) le fragment EcoRI SmaI isolé de pMLP11; Cette construction est issue de pMLP10 (Levrero et al., 1991, Gene, 101, 195-202) et diffère du vecteur parental par l'introduction d'un site SmaI au niveau du site HindIII. On obtient le vecteur M13TG6501. Celui-ci 2 o est soumis à une mutagénèse dirigée afin de déléter les séquences comprises entre les nucléotides 184 à 273 de la région d'encapsidation. La mutagénèse dirigée est réalisée selon les techniques standard et met en oeuvre l'oligonucléotide OTG4174 reporté dans l'identificateur de séquence n l (SEQ ID NO:1). Le vecteur muté est désigné M13TG6502. La région d'encapsidation ainsi délétée est réintroduite sous forme d'un fragment EcoRI-BgllI, le site BglII étant rendu franc par traitement à l'ADN polymérase Klenow, dans le vecteur pMLP11 digéré par EcoRI et SmaI. Le vecteur obtenu pTG6500 est digéré partiellement par PstI, traité à l'ADN polym6rase du phage T4 et digéré par PvuI. On insère dans ce vecteur le fragment PvuI-HpaI isolé de pIX. Ce fragment comporte le signal de terminaison de la transcription du virus SV40 et le fragment adénoviral du nucléotide 3329 au nucléotide 6241. Le vecteur pTG6505 ainsi généré est digéré partiellement par SphI, traité à l'ADN polymérase du phage T4 et 3 5 religué, ceci afin de détruire le site SphI situé en 5' du polylinker. Il résulte le pTG6511, dans lequel on clone, après digestion par BamHI et traitement à -25 - l'ADN polymérase Klenow, l'ADNc CFTR humain sous forme d'un fragment aux extrémités franches généré par digestion XhoI et AvaI et traitement à l'ADN polymérase Klenow. On obtient pTG6525. b. Génération d'un adénovirus recombinant défectif et atténué. Les adénovirus défectifs recombinants sont générés par recombinaison homologue selon les techniques standard. Plus particulièrement, le plasmide pTG6525 est linéarisé par ClaI et cotransfecté dans les cellules 293 avec un 0o ADN Ad-d1324 (Thimmappaya et al., 1982, Cell, 31, 543-551) également digéré par ClaI. L'ADN recombinant adénoviral est répliqué et encapsidé dans des virions infectieux, formant des plages qui sont criblées selon les procédures standard. Les plages individuelles sélectionnées sont amplifiées dans les cellules 293. Des stocks viraux sont constitués et leur titre déterminé selon les techniques conventionnelles. 2. Construction d'un virus "atténué" conmprenant une délétion du nucléotide 270 au nucléotide 346 de la région d'encapsidation. On construit tout d'abord un plasmide qui correspond au pTG6525, mais dans lequel la région d'encapsidation est délétée des séquences comprises entre les nucléotides 270 et 346. Le vecteur M13TG6501 est soumis à une mutagénèse dirigée mettant en oeuvre l'oligonucléotide OTG4173 reporté dans la SEQ ID NO: 2. Puis le fragment muté est isolé après digestion BglII, traitement à l'ADN polymérase Klenow et digestion EcoRI. Il est introduit entre les sites EcoRI et SmaI du plasmide pMLP11, pour générer le vecteur pTG6501. Ce dernier est digéré par SphI, traité à l'ADN polymérase du phage T4, et digéré par PvuI. On 3 o clone dans le pTG6501 ainsi traité, un fragment PvuI-KpnI, le site KpnI ayant été rendu franc. Ce fragment est isolé de pTG6525 et comporte l'ADNc CFIR humain. Les virus atténués sont générés par recombinaison homologue selon le protocole décrit ci-dessus. -26 - EXEMPLE 2: Construction d'un adénovirus défectif délété de la région E1B. Un tel adénovirus est généré à partir d'un vecteur plasmidique comprenant de 5' vers 3': I'ITR5' de l'Ad5 (du nucléotide 1 au nucléotide 103), - la région d'encapsidation de l'Ad5 (du nucléotide 104 au nucléotide 458), une séquence nucléotidique exogène comportant une cassette d'expression, laquelle comprend les éléments suivants: * le MLP de l'Ad2 (nucléotides 5779 à 6038), suivi des trois leaders tripartites également de l'Ad2 (nucléotides 6039-6079; nucléotides 7101-7175; nucléotides 9637-9712); ces leaders sont inclus afin d'augmenter l'efficacité de traduction des séquences insérées en aval, Un polylinker comprenant de 5' vers 3' les sites de restrictions XbaI, HindIII, BamHI et NotI utilisables pour le clonage d'un gène d'intérêt, * Un gène d'intérêt, le signal de terminaison de la transcription isolé 3 o du virus SV40 (nucléotides 2543 à 2618), la portion du génome adénoviral de i'Ad5 allant du nucléotide 4047 au nucléotide 6241. La construction d'un tel adénovirus peut se réaliser de la manière suivante. -27- Le fragment du génome adénoviral, du nucléotide 4047 au nucléotide 4614 est amplifié par PCR à partir du vecteur pBRE1. Le vecteur pBRE1 provient de l'insertion d'un fragment comportant l'extrémité 5' de l'Ad5 jusqu'au site XhoI en position 5778, entre le site HindIII rendu franc et le site SalI de pBR322 (Bolivar et al., 1977, Gene, 2, 95-113). La réaction PCR met en oeuvre l'amorce sens OTG5021 (reporté dans la SEQ ID NO:3), comprenant en son extrémité 5' un site BamHI destiné à faciliter les étapes de clonage ultérieures, et l'amorce anti-sens OTG5157, décrit dans la SEQ ID NO:4. Le fragment généré est traité à l'ADN polymérase Klenow, afin de générer des extrémités franches, et cloné dans le site SmaI de M13mpl8 (Gibco BRL), donnant lieu au M13TG6517. La séquence du fragment généré par PCR est vérifiée selon la méthode enzymatique classique (Sanger et al., 1977 Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 74, 5463). Par ailleurs, le fragment PvuI-SmaI est isolé de pMLP11. Il est cloné entre les sites PvuI et KpnI de pTG6511 (décrit dans l'exemple 1), le site KpnI ayant été rendu franc par un traitement à l'ADN polymérase du phage T4 selon les méthodes standards. On génère ainsi le vecteur pTG6547. Le pTG6547 est digéré par les enzymes SalI et BstXI et ligué à deux fragments, d'une part le fragment BamHI-BstXI purifié de M13TG6517 et, d'autre part, le fragment XhoI et BgllI de pTG6185. Le pTG6185 comprend notamment le signal de terminaison de la transcription du virus SV40 encadré par les sites de restriction XhoI et BglI. Mais, tout autre plasmide comportant la même séquence de terminaison et des sites de restriction adéquates pourrait être utilisé. On obtient le vecteur pTG6555. On insère Ie gène d'intérêt dans le polylinker prévu à cet usage. Par exemple l'ADNc CFTR humain, sous forme d'un fragment SacI-PstI, le site PstI étant franc, est inséré dans le site BamHI rendu franc de pTG6555. Comme indiqué précédemment, la composition en acides aminés de la protéine CFTR correspond à la séquence publiée par Riordan et al., (supra), à l'exception d'une valine à la place de la méthionine en position 470. -28 - Les adénovirus défectifs délétés de la région E1B et recombinants sont générés par recombinaison homologue selon le protocole décrit précédemment. EXEMPLE 3: Construction d'un virus "minimum" défectif. Le génome d'un adénovirus minimum est constitué d'une molécule d'ADN comportant: - l'ITR 5' de l'Ad5 (du nucléotide 1 au nucléotide 103); la région d'encapsidation de l'Ad5 (du nucléotide 104 au nucléotide 458); une séquence nucléotidique exogène comprenant: un premier gène d'intérêt thérapeutique placé de préférence sous le contrôle de son propre promoteur afin d'obtenir une régulation de l'expression la plus 2 o proche possible de la régulation naturelle, un deuxième gène d'intérêt constitué du gène TK-HSV- 1, et 25. de manière facultative, des séquences nucléotidiques quelconques ajoutées pour des raisons d'efficacité d'encapsidation de manière à ce que la taille totale du génome à encapsider soit comprise entre 30 et 36kb; 3 o les séquences codant pour la protéine Gal4 de Saccharomyces cerevisiae (Laughon et Gesteland, 1984, Mol. Cell. Biol., 4, 260- 267) placées sous le contrôle d'un promoteur fonctionnel dans une cellule eucaryote supérieure; et - l'ITR 3' de l'Ad5 (nucléotides 35833 à 35935). -29 - L'assemblage des différentes portions du génome est réalisé selon les techniques standard de biologie moléculaire. L'obtention des virions infectieux comprenant un tel génome se fait comme décrit précédemment. EXEMPLE 4: Constitution d'une lignée de complémentation de la fonction El. 1. Construction d'un élément de complémnentation comprenant la région El de l'Ad5 a Construction de pTG6533 Celui-ci comporte un élément de complémentation qui contient: - une cassette d'expression du gène pac, lequel est placé sous le contrôle du promoteur précoce du virus SV40 (nucléotides 5171 à 5243) et comprend en 3' le signal de terminaison de la transcription de SV40 (nucléotides 2543 à 2618). Le gène pac utilisé correspond à un fragment allant du nucléotide 252 au nucléotide 905 de la séquence divulguée par Lacalle et al. (1989, Gene, 79, 375-380) et comportant 4 mutations par rapport à la séquence publiée (C en position 305 remplacé par A; C en position 367 remplacé par T; insertion d'un G en position 804; délétion d'un G en position 820), un fragment du génome del'Ad5 allant du nucléotide au nucléotide 5297. Ce fragment comprend la région E1 munie de son propre promoteur et de son signal de terminaison de la transcription ainsi qu'une fraction de la région E2. La construction est réalisée en plusieurs étapes détaillées ci-après. Le vecteur p polyll-I* (Lathe et al., 1987, Gene, 57, 193-201) est soumis à une digestion par les enzymes AccI et EcoRI. On clone dans le vecteur ainsi traité -30- le fragment EcoRI-ClaI isolé du plasmide pTG6164. On obtient le vecteur pTG6528. Le plasmide pTG6164 est issu de pLXSN (Miller D, 1989, Bio/Techniques, 7, 980) et comprend le gène pac placé sous le contrôle du promoteur précoce du virus SV40. Brièvement, le fragment HindIII-KpnI de pLXSN est introduit dans M13 TG131 (Kieny et al., supra) pour produire M13TG4194. On insère dans ce dernier, digéré par NheI et KpnI, le fragment NheI-KpnI de pMPSV H2 K IL2R (Takeda et al., 1988, Growth Factors, 1, 59-66) pour produire M13TG4196. Celui-ci est digéré par HindIII-KpnI et on clone le fragment issu d'une digestion HindIII et d'une digestion partielle KpnI et purifié de pLXSN. On obtient pTG5192. Ce dernier est digéré par HindIII et partiellement par NheI et on introduit le fragment HindIII-NheI de pBabe Puro (Land et al., 1990, Nucleic Acids Res., 18, 3587), donnant lieu à pTG6164. Le vecteur pTG6528 est digéré par PstI et on introduit au niveau de ce site le fragment PstI isolé de pTG6185 (voir exemple 2) comportant le signal de terminaison de la transcription de SV40. On obtient pTG6529. Ce dernier est 2 0 soumis à une digestion EcoRI-HpaI et ligué à deux fragments, d'une part un fragment généré par PCR aux extrémités EcoRI et BspEI et d'autre part un fragment BspEI-BcgI purifié de pBRE1. On génère le pTG6531. Le fragment PCR est généré par amplification génique à partir de pBRE1 à l'aide des amorces OTG4564 et OTG4565 (reporté dans les SEQ ID NO: 5 et 6). Le fragment amplifié est coupé par les enzymes EcoRI et BspEI et mis en ligation comme indiqué dans le paragraphe précédent. Le vecteur pTG6531 comprend les 2 unités de transcription (celle de la région E1 et celle du gène pac) dans la même orientation. Pour éviter des interférences au niveau de la transcription, on les place dans une orientation réverse en coupant le pTG6531 par BamHI et en religant. Le clone pTG6533 correspond à un clone présentant l'orientation voulue c'est à dire reverse des deux unités. b. Construction de pTG6557, pTG6558, pTG6564 et pTG6565. -31 - Les vecteurs pTG6557 et pTG6558 comprennent un élément de complémentation comportant: - une cassette d'expression du gène pac (nucléotides 252 à 905 comme précédemment) sous le contrôle soit du promoteur E2A natif de l'Ad2 (nucléotides 27341 à 27030) dans pTG6558, soit du promoteur E2A de l'Ad2 délété de la séquence comprise entre les nucléotides 27163 à 27182, dans pTG6557. Une telle mutation permet de diminuer le niveau de base du promoteur E2A, sans affecter l'inductibilité par la protéine trans-activatrice codée par ElA. Ladite cassette d'expression comporte en 3' le signal de terminaison de la transcription du virus SV40 (nucléotides 2543 à 2618); et - une cassette d'expression comportant la partie de la région E1 de l'Ad5 allant du nucléotide 505 au nucléotide 4034. Cette portion du génome adénoviral contient l'ensemble des séquences codantes de la région E1A, le signal de terminaison de la transcription de l'unité E1A, le promoteur E1B (inductible par la protéine trans- activatrice codée par E1A) et les séquences codantes de la région E1B. Elle inclut également les séquences codant pour la protéine IX, qui recouvrent la région E1B. Cependant, elle est dépourvue du promoteur de la région E1A et du signal de terminaison de la transcription des unités transcriptionnelles E1B et IX. Afin de permettre l'expression des séquences codantes portées par cette portion du génome adénoviral, l'élément de complémentation comprend en 5' du fragment adénoviral, le promoteur du gène murin PGK et en 3' le signal de terminaison de la transcription du gène B3-globine de lapin (nucléotides 1542 à 2064 de la séquence divulguée dans la banque de donnée Genebank sous la référence K03256). De manière facultative, on peut introduire des séquences nucléotidiques quelconques, par exemple des séquences isolées de pBR322, entre les -32 cassettes d'expression du gène pac et de la région El; afin d'éviter d'éventuelles interférences transcriptionnelles. De telles constructions correspondent à pTG6564 qui dérive de pTG6557 et pTG6565 qui dérive de pTG6558. L'élément de complémentation porté par l'un de ces 4 vecteurs présente l'avantage par rapport à celui porté par pTG6533 de ne comporter que les séquences nécessaires à la complémentation, c'est à dire les séquences codantes de la région El. La construction de ces vecteurs s'effectue en plusieurs étapes reportées ci-dessous. En premier lieu, on amplifie par PCR, le fragment du génome de l'Ad5 allant du nucléotide 505 au nucléotide 826 à partir du vecteur pBRE1 et à l'aide des amorces OTG5013 qui comprend en 5' un site PstI utile pour les étapes de clonage ultérieures et qui est décrit dans la SEQ ID NO:7 et OTG4565 chevauchant le site BspEl (SEQ ID NO:6). Le fragment généré par PCR, est traité à l'ADN polymérase Klenow puis introduit dans le site SmaI de M13mpl8 (Gibco BRL) donnant lieu à M13TG6512. La séquence du fragment PCR est vérifiée. Le vecteur pTG6533 (voir exemple 4; comprenant la région E1 de l'Ad5 du nucléotide 100 au nucléotide 5297) est digéré par les enzymes EcoRI et BspEl. On ligue le vecteur ainsi traité avec, d'une part, le fragment PstI- BspEl isolé de M13TG6512 et, d'autre part, le fragment EcoRI-PstI isolé de pKJ-1. Ce dernier comprend la portion du promoteur du gène murin PGK, située entre les nucléotides -524 et -19, dont la séquence est reportée dans Adra et al. (1987, Gene, 60, 65-74),. Cette étape qui génère le pTG6552 permet d'insérer le promoteur du gène murin PGK en amont de la région E1 de l'Ad5 débutant au nucléotide 505. Par ailleurs, le fragment XhoI-BamHI, dont l'extrémité générée par XhoI est rendue franche suite au traitement par l'ADN polymérase Klenow, est purifié de pBCMG Neo (Karasuyama et al., 1989, J. Exp. Med., 169, 13-25). Ce fragment, qui comprend le signal de terminaison de la transcription du gène B3-globine de lapin, est introduit entre les sites SmaI et BamHI du vecteur ppolylI-Sfi/Not-14* (Lathe et al., 1987, Gene, 57, 193- 201). Le -33 - vecteur pTG6551 qui résulte, est quant à lui digéré par les enzymes SphI et EcoRV afin d'y insérer un fragment du génome de l'Ad5 allant du nucléotide 3665 au nucléotide 4034. Ce fragment est généré par PCR selon le protocole standard. On utilise le vecteur pBRE1 à titre de matrice et les amorces OTG5015 (qui recouvre le site interne SphI en position 3665 et qui est décrit dans la SEQ ID NO:8) et OTG 5014 (comprenant en 5' un site BglII et reporté dans la SEQ ID NO:9). Le fragment PCR, traité par l'ADN polymérase Klenow, est cloné dans le site SmaI de M13mpl8, générant M13TG6516. Après vérification de sa séquence, le fragment PCR est resorti par digestion par BglII, traitement à l'ADN polymérase Klenow et digestion par SphI. Il est inséré entre les sites SphI etEcoRV de pTG6551. Il en résulte pTG6554. D'autre part, le vecteur pTG6529 (décrit dans l'exemple 4) est soumis à une digestion par les enzymes HpaI et HindIII. On purifie le fragment de 2,9 kb comportant le gène pac suivi du signal de terminaison de la transcription du virus SV40. Celui-ci est ligué au fragment SmaI-HindIII isolé de pE2 Lac (Boeuf et al., 1990, Oncogene, 5, 691-699) qui porte le promoteur E2A de l'Ad2. On obtient le vecteur pTG6556. De manière alternative, il peut être ligué au fragment SmaI-HindIII isolé de pE2 Lac a9170 (Zajchowski et al., EMBO J., 4, 1293-1300) qui porte le promoteur E2A muté de l'Ad2. On obtient, dans ce cas, pTG6550. pTG6556 est digéré par les enzymes EcoRI et BamHI. On insère entre ces sites, le fragment EcoRI-SacII isolé de pTG6552 et le fragment SacIIBamHI isolé de pTG6554. On obtient le vecteur pTG6558. La même étape réalisée sur pTG6550 génère pTG6557. pTG6557 et pTG6558 sont digérés par EcoRV, site unique situé entre les deux cassettes d'expression (gène pac et région El). On clone dans ce site, un fragment EcoRV-PvuH de 1,88kb isolé de pBR322 (Bolivar et al., supra), afin d'éloigner les deux promoteurs. On génère respectivement pTG6564 et pTG6565. 2. Génération d'une lignée de comnplémentation de la fonction El. -34 - Le vecteur pTG6533, pTG6557, pTG6558, pTG6564 ou pTG6565 est transfecté dans une lignée cellulaire Vero (par exemple ATCC, référence * CCL 81) selon les techniques standard bien connues de l'homme du métier. On peut citer la technique au phosphate de calcium (Maniatis et al., supra). Mais d'autres protocoles permettant d'introduire un acide nucléique dans une cellule peuvent également être employés, tels que la technique au DEAE dextran, l'électroporation, les méthodes basées sur les chocs osmotiques, la microinjection d'une cellule sélectionnée ou les méthodes basées sur l'emploi de liposomes. Les cellules sont cultivées selon les conditions standard et sont placées en milieu sélectif contenant de la puromycine, 24 heures après la transfection. On évalue l'expression des gènes de la région El à partir de différents clones cellulaires et on détermine le clone le plus producteur, qui pourra être utilisé à titre de lignée de complémentation pour la préparation d'un adénovirus défectif pour la fonction El, tel que celui détaillé dans l'exemple 2. Une lignée de complémentation comportant un élément de complémentation 2 o porté par pTG6557, pTG6558, pTG6564 ou pTG6565, ne comprend aucune séquence d'Ad5 commune avec un tel adénovirus, de sorte que le risque de recombinaison est nul. EXEMPLE 5: Constitution d'une lignée de complémentation pour 2 5 l'ensemble des fonctions essentielles à la réplication d'un adénovirus. On construit un vecteur comprenant l'ensemble du génome adénoviral de r'Ad5 à l'exception de l'ITR5', I'ITR3' et la région d'encapsidation. 3 o Le vecteur pTG6528 (décrit dans l'exemple 4) est digéré par les enzymes PstI et Bglll. On insère entre ces sites un fragment d'ADN synthétisé chimiquement selon le protocole standard constitué des oligonucléotides des OTG5039 et OTG5040 (SEQ ID NO:10 et 11). La séquence des oligonucléotides est conçue de manière à ne pas reconstituer le site de clonage PstI et introduire un site EcoRV. On obtient pTG1639, lequel est linéarisé par digestion par EcoRV et ligué à un fragment XbaI-BamHI dont -35 - les extrémités sont rendues franches par traitement à l'ADN polymérase Klenow. Ce fragment est porteur du signal de terminaison de la transcription du virus SV40. Tout plasmide comportant un signal entouré des sites de restriction adéquates peut être utilisé à cette étape. Le vecteur pTG1640 ainsi généré, est digéré par BamHI et BglII et le fragment porteur de la cassette d'expression du gène pac est introduit dans le site BglII du vecteur pPolyII-Sfi/Not-14* (Lathe et al., supra). On obtient le pTG 1641. Celui-ci est linéarisé par NotI, traité à l'ADN polymérase Klenow. On introduit le fragment BamHI-SalI de 0,276 kb isolé de pBR322 (Bolivar et al., supra) également traité à l'ADN polymérase Klenow. Ceci donne lieu à pTG1643. Le pTG1643 est linéarisé par XhoI et on insère dans ce site un fragment hybride XhoI comportant un dimère d'éléments UAS du gène GallO placé en ' du promoteur minimum du gène TK-HSV-1. Le dimère UAS est synthétisé chimiquement à l'aide des oligonucléotides reportés dans les SEQ ID NO:12 et 13. Le fragment d'ADN ainsi généré est introduit en 5' du promoteur minimum du gène TK-HSV1. Ce promoteur correspond au fragment allant 2 o du nucléotide 303 et se terminant au nucléotide 450 de la séquence divulguée dans la banque de donnée Genebank sous la référence V00467 et dans lequel on a introduit un site XhoI en 3' dudit promoteur. On obtient le pTG1647 dans lequel le promoteur hybride UAS GallO-TK-HSV- 1 est inséré dans la même orientation que la cassette d'expression du gène pac. Cette construction, pTG1647, sert de vecteur de base pour introduire entre les sites PstI et BamHI un fragment du génome de l'Ad5, et plus particulièrement le fragment de l'Ad5 allant du nucléotide 505 au nucléotide 35826. Dans un premier temps, le pTG1647 est digéré par PstI et BamHI puis ligué, d'une part, au fragment PstI-ClaI de pTG6552 (voir exemple 4) comportant la partie du génome de l'Ad5 des nucléotides 505 à 918 et, d'autre part, au fragment ClaI-BamHI préparé à partir de l'ADN génomique de l'Ad5 et correspondant à la séquence de l'Ad5 du nucléotide 918 au nucléotide 21562. -36 - Le vecteur ainsi obtenu, comporte la partie 5' de l'Ad5 à l'exception de l'ITR5' et de la région d'encapsidation. Par ailleurs, la partie 3' du génome de l'Ad5 est assemblée dans le vecteur ppolyll-Sfi/Not-14* (Lathe et al., supra). Ce dernier est linéarisé par BamHI et on introduit le fragment BamHI-AvrII (nucléotides 21562 à 28752) isolé de l'ADN génomique de l'Ad5 et un fragment généré par PCR correspondant à la séquence du génome de l'Ad5 des nucléotides 35463 à 35826. Ce fragment est généré par PCR à partir de l'ADN génomique de l'Ad5 et des amorces OTG5024 (SEQ ID NO:14) et OTG5025 (SEQ ID NO:15) comportant en 5' un site BamHI. Le vecteur en résultant est ensuite digéré par AvrII et on insère le fragment AvrII isolé de l'ADN génomique de l'Ad5 et s'étendant des positions 28753 à 35462. Le vecteur généré dans l'étape précédente, est digéré par BamHI et le fragment BamHI comportant les séquences adénovirales est introduit dans le site BamHI du vecteur décrit ci-dessus comportant la partie 5' du génome adénoviral dépourvu de l'ITR5' et la région d'encapsidation. 2 o On génère ainsi un vecteur comportant un élément de complémentation pour l'ensemble des fonctions d'un adénovirus. La lignée de complémentation est générée par transfection dans une lignée cellulaire selon le protocole décrit dans l'exemple précédent. EXEMPLE 6: Constitution d'une lignée de complémentation pour les fonctions E1 et E4. Le vecteur pTG1647 est digéré par les enzymes PstI-BamHI et on introduit 3 o dans le vecteur ainsi traité 3 fragments: le fragment PstI-XbaI de pTG6552 (exemple 4) portant les séquences d'Ad5 du nucléotide 505 au nucléotide 1339, - - le fragment XbaI-SphI de pTG6552 portant les séquences d'Ad5 du nucléotide 1340 au nucléotide 3665, et -37- le fragment SphI-BamHI de pTG6554 (exemple 4) portant les séquences d'Ad5 du nucléotide 3665 à 4034 et un signal de terminaison de la transcription. Le vecteur ainsi obtenu est coupé par BamnHI et on introduit dans ce site trois fragments qui sont les suivants: un fragment digéré par BamnHI-AflII généré par PCR correspondant à la séquence de l'Ad5 situé entre les positions 32800 à 33104. On utilise l'ADN génomique d'Ad5 comme matrice et les amorces OTG5078 (SEQ ID NO:16) et OTG5079 (SEQ ID NO:17), - le fragment Af1I-AvrII isolé de l'ADN génomique d'Ad5 (nucléotides 33105 à 35463), le fragment AvrII-BamHI généré par PCR à l'aide des amorces OTG5024 et OTG5025 (voir exemple 5). Le vecteur ainsi généré est introduit dans une lignée cellulaire selon le protocole décrit précédemment, pour constituer une lignée de complémentation. -38- LISTE DES SEOUENCES SEQ ID NO:1 TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 30 nucléotides NOMBRE DE BRINS: simple CONFIGURATION: linéaire ANTI-SENS: non TYPE DE MOLECULE: ADN PROPRIETES: oligonucléotide de mutagénèse (OTG4174) permettant la délétion des nucléotides 184 à 273 de la région d'encapsidation de l'AdS. GTGACGTCTT TGGTGTTTTC GCGGGAAAAC 30 SEQ ID NO:2 2 o TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 39 nucléotides NOMBRE DE BRINS: simple CONFIGURATION: linéaire ANTI-SENS: non TYPE DE MOLECULE: ADN PROPRIETES: oligonucléotide de mutagénèse (OTG4173) permettant la délétion des nucléotides 270 à 346 de la région d'encapsidation de l'Ad5. GGCCATGGTC GCGGGAAAAC TGAAGGGACT TTGACCGTT 39 -39- SEQ ID NO:3 TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 31 nucléotides NOMBRE DE BRINS: simple CONFIGURATION: linéaire ANTI-SENS: non TYPE DE MOLECULE: ADN PROPRIETES: amorce de PCR (OTG5021) pour l'isolement d'un fragment du génome de l'Ad5 (nucléotides 4047 à 4614) et comprenant en 5' un site BamHI destiné à faciliter les étapes de clonage ultérieures. GAACGGATCC CCAGACTCTG TTTGGATTTG G 31 SEQ ID NO:4 TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique 2 0 LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 30 nucléotides NOMBRE DE BRINS: simple CONFIGURATION: linéaire ANTI-SENS: oui TYPE DE MOLECULE: ADN PROPRIETES: amorce de PCR (OTG5157) correspondant aux nucléotides 4656 à 4639 du génome de l'Ad5. CCAGAAATAT CTTCGCCCAG GCCGCCGCCC 30 -40 - SEQ ID NO:5 TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 32 nucléotides NOMBRE DE BRINS: simple CONFIGURATION: linéaire ANTI-SENS: non TYPE DE MOLECULE: ADN PROPRIETES: amorce PCR (OTG4564) pour l'amplification de l'extrémité ' du génome de l'Ad5 délétée de l'ITR5'; OTG4564 correspond aux nucléotides 100 à 120 de l'Ad5 et comprend en outre, en son extrémité 5' un site EcoRI destiné à faciliter les étapes de clonage ultérieures. TCCGTGAATT CTAGTAGTGT GGCGGAAGTG TG 32 SEQ ID NO:6 TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 23 nucléotides NOMBRE DE BRINS: simple CONFIGURATION: linéaire ANTI-SENS: oui TYPE DE MOLECULE: ADN PROPRIETES: amorce PCR (OTG4565) pour l'amplification de l'extrémité ' du génome de l'Ad5 délétée de l'ITR 5'; OTG4565 correspond aux nucléotides 831 à 814 de l'Ad5. TCCAGTCCGG AGAACCGGGC GCC 23 -41- SEQ ID NO:7 TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 28 nucléotides NOMBRE DE BRINS: simple CONFIGURATION: linéaire ANTI-SENS: non TYPE DE MOLECULE: ADN PROPRIETES: amorce PCR (OTG5013) correspondant aux nucléotides 505 à 522 de l'Ad5 et comprenant en 5' un site PstI destiné à faciliter les étapes de clonage ultérieures. TAACCTGCAG GAGTGCCAGC GAGTAGAG 28 SEQ ID NO:8 TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique 2 0 LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 21 nucléotides NOMBRE DE BRINS: simple CONFIGURATION: linéaire ANTI-SENS: non TYPE DE MOLECULE: ADN PROPRIETES: amorce PCR (OTG5015) correspondant aux nucléotides 3655 à 3675 de l'Ad5. CAACGCGCAT GCCCCCATGG G 21 -42- SEQ ID NO:9 TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 31 nucléotides NOMBRE DE BRINS: simple CONFIGURATION: linéaire ANTI-SENS: oui TYPE DE MOLECULE: ADN o PROPRIETES: amorce PCR (OTG5014) correspondant aux nucléotides 4034 à 4014 de l'Ad5 et comprenant en 5' un site BglII destiné à faciliter les étapes de clonage ultérieures. TAGGAGATCT GTTTTAAACC GCATTGGGAG G 31 SEQ ID NO:10 TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 16 nucléotides NOMBRE DE BRINS: simple CONFIGURATION: linéaire ANTI-SENS: non TYPE DE MOLECULE: ADN PROPRIETES: oligonucléotide (OTG5039) introduisant un site EcoRV de clonage. TGCTGGATAT CAGTCA 16 -43 - SEQ ID NO:11 TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 24 nucléotides NOMBRE DE BRINS: simple CONFIGURATION: linéaire ANTI-SENS: oui TYPE DE MOLECULE: ADN PROPRIETES: oligonucléotide (OTG5040) introduisant un site EcoRV de clonage GATCTGACTG ATATCCAGCA TGCA 24 SEQ ID NO:12 TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 34 nucléotides o NOMBRE DE BRINS: simple CONFIGURATION: linéaire ANTI- SENS: non TYPE DE MOLECULE: ADN PROPRIETES: oligonucléotide correspondant à, un dimère d'UAS du gène GallO de Saccharomyces cerevisiae. CGGAGTACTG TCCTCCGCGG AGTACTGTCC TCCG 34 -44 - SEQ ID NO:13 TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 34 nucléotides NOMBRE DE BRINS: simple CONFIGURATION: linéaire ANTI-SENS: oui TYPE DE MOLECULE: ADN PROPRIETES: oligonucléotide correspondant à un dimère d'UAS du gène GallO de Saccharomyces cerevisiae. CGGAGGACAG TACTCCGCGG AGGACAGTAC TCCG 34 SEQ ID NO:14 TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 20 nucléotides 2 o NOMBRE DE BRINS: simple CONFIGURATION: linéaire ANTI- SENS: non TYPE DE MOLECULE: ADN PROPRIETES: amorce PCR (OTG5024) correspondant aux nucléotides 35457 à 35476 de l'Ad5. CTCCTGCCTA GGCAAAATAG 20 -45 - SEQ ID NO:15 TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 32 nucléotides NOMBRE DE BRINS: simple CONFIGURATION: linéaire ANTI-SENS: oui TYPE DE MOLECULE: ADN 1o PROPRIETES: amorce PCR (OTG5025) correspondant aux nucléotides 35826 à 35807 de l'Ad5 et comprenant en 5' un site BamHI destiné à faciliter les étapes de clonage ultérieures. GCAGATGGAT CCGGGCGGAG TAACTTGTAT GT 32 SEQ ID NO:16 TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 31 nucléotides NOMBRE DE BRINS: simple CONFIGURATION: linéaire ANTI-SENS: non TYPE DE MOLECULE: ADN PROPRIETES: amorce PCR (OTG5078). GTCGCGGATC CGTTATGTTT CAACGTGTTT A 31 -46 - SEQ ID NO:17 TYPE DE SEQUENCE: acide nucléique LONGUEUR DE LA SEQUENCE: 20 nucléotides NOMBRE DE BRINS: simple CONFIGURATION: linéaire ANTI-SENS: oui TYPE DE MOLECULE: ADN PROPRIETES: amorce PCR (OTG5079). ACATGAACTT AAGCGAGCTG 20 - 47 - Revendications 1. Un adénovirus défectif pour la réplication sélectionné parmi: (a) un adénovirus dérivé d'un adénovirus naturel en ce qu'il est dépourvu: (i) d'au moins les séquences codantes de la région E1B, et/ou (ii) d'au moins une partie de la région E4; (b) un adénovirus dérivé d'un adénovirus naturel autre qu'un adénovirus humain de type 5, en ce qu'il est dépourvu d'une partie de la région d'encapsidation. 2. Un adénovirus défectif pour la réplication sélectionné parmi: (a) un adénovirus dérivé d'un adénovirus naturel en ce qu'il est dépourvu: (i) d'au moins les séquences codantes de la région E1B, et/ou (ii) d'au moins une partie de la région E4; (b) un adénovirus dérivé d'un adénovirus humain de type 5, en ce qu'il est dépourvu: (i) d'une partie de la région d'encapsidation allant du nucléotide 270 au nucléotide 346 de la séquence telle que divulguée dans la banque de donnée Genebank sous la référence M73260, ou (ii) d'une partie de la région d'encapsidation allant du nucléotide 184 au nucléotide 273 de la séquence telle -48 - que divulguée dans la banque de donnée Genebank sous la référence M73260 3. Un adénovirus selon la revendication 2, dérivé d'un adénovirus humain de type 5, en ce qu'il est dépourvu: (i) d'au moins les séquences codantes de la région E1B; ladite délétion se terminant au nucléotide 4047 de la séquence telle que divulguée dans la banque de donnée Genebank sous la référence M73260; et/ou (ii) de tout ou partie de la région E4; ladite région E4 étant située entre les nucléotide 32800 et 35826 de la séquence divulguée dans la banque de donnée Genebank sous la référence M73260 et/ou (iii) d'une partie de la région d'encapsidation: allant du nucléotide 270 au nucléotide 346 de la séquence telle que divulguée dans la banque de donnée Genebank sous la référence M73260, ou allant du nucléotide 184 au nucléotide 273 de la séquence telle que divulguée dans la banque de donnée Genebank sous la référence M73260 4. Un adénovirus selon l'une des revendications 1 à 3, dépourvu, en outre, de tout ou partie de la région E1A. 5. Un adénovirus selon l'une des revendications 1 à 4, dépourvu, en outre, de tout ou partie de la région E3. 6. Un adénovirus selon la revendication 5, dépourvu de la partie de la région E3 qui ne comprend pas les séquences codant pour la protéine gpl9kDa; lesdites séquences codant pour la protéine gpl9kDa étant placées sous le contrôle d'éléments appropriés à leur expression. -49 - 7. Un adénovirus selon l'une des revendications 1 à 6, dépourvu, en outre, de tout ou partie de la région E2. 8. Un adénovirus selon l'une des revendications 1 à 7, dépourvu, en outre, de l'ensemble des gènes codant pour les protéines précoces et tardives et comprenant néanmoins les ITRs 5' et 3' et tout ou partie de la région d'encapsidation dudit adénovirus. 9. Un adénovirus selon l'une des revendications 1 à 8, comprenant, en outre, une séquence nucléotidique exogène. 10. Un adénovirus selon la revendication 9, dans lequel la séquence nucléotidique exogène comprend un ou plusieurs gènes d'intérêt; lesdits gènes d'intérêt étant placés sous le contrôle d'éléments appropriés à leur expression. 11. Un adénovirus selon la revendication 10, dans lequel le ou l'un des gène(s) d'intérêt est constitué par le gène humain codant pour la protéine CFTR. 12. Un adénovirus selon la revendication 10, dans lequel le ou l'un des gène(s) d'intérêt est constitué par le gène de la thymidine kinase du virus de l'herpès simplex de type 1. 13. Un adénovirus selon l'une des revendications 1 à 12, comprenant, en outre, un gène codant pour une protéine trans-activatrice de transcription. 14. Un adénovirus selon la revendication 13, dans lequel ledit gène codant pour une protéine trans-activatrice de transcription est constitué par le gène codant pour la protéine Gal4 de Saccharomyces cerevisiae. -50 - 15. Un adénovirus selon l'une des revendications 1, 2 et 4 à 14, dérivé d'un adénovirus naturel sélectionné parmi un adénovirus canin, un adénovirus aviaire et un adénovirus humain. 16. Un adénovirus selon l'une des revendications 2 à 14, dérivé d'un adénovirus humain de type 5. 17. Une cellule eucaryote comprenant un adénovirus selon l'une des revendications 1 à 16. 18. Une lignée de complémentation constituée par une lignée cellulaire comportant un élément de complémentation comprenant au moins une partie de la région E1 d'un adénovirus naturel et dépourvu de la séquence ITR 5'; ledit élément de complémentation étant soit intégré dans le génome, soit inséré sur un vecteur. 19. Une lignée de complémentation selon la revendication 18, dans laquelle ledit élément de complémentation est en outre dépourvu du promoteur de la région E1A; ledit promoteur de la région ElA étant substitué par un promoteur non-adénoviral approprié. 20. Une lignée de complémentation selon la revendication 19, dans laquelle ledit promoteur non-adénoviral approprié est constitué par un promoteur inductible par une protéine trans-activatrice de transcription. 21. Une lignée de complémentation selon la revendication 20, dans laquelle ledit promoteur inductible par une protéine trans-activatrice de transcription est constitué par un promoteur inductible par la protéine Gal4 de Saccharomyces cerevisiae. 22. Une lignée de complémentation selon l'une des revendications 18 à 21, dans laquelle ledit élément de complémentation comprend au moins une partie de la région E1 d'un adénovirus humain de type 5 sélectionnée parmi: -51- (i) la région ou une région homologue allant du nucléotide 100 et se terminant au nucléotide 5297 de la séquence telle que divulguée dans la banque de donnée Genebank sous la référence M73260, et (ii) la région ou une région homologue allant du nucléotide 100 et se terminant au nucléotide 4034 de la séquence telle que divulguée dans la banque de donnée Genebank sous la référence M73260, et (iii) la région ou une région homologue allant du nucléotide 505 et se terminant au nucléotide 4034 de la séquence telle que divulguée dans la banque de donnée Genebank sous la référence M73260; ladite région étant placée sous le contrôle des éléments appropriés à son expression. 23. Une lignée de complémentation selon l'une des revendications 18 à 22, dans laquelle ledit élément de complémentation comprend, en outre, au moins une partie de la région E4 d'un adénovirus naturel. 24. Une lignée de complémentation selon la revendication 23, dans laquelle ledit élément de complémentation comprend au moins une partie de la région E4 d'un adénovirus humain de type 5; ladite région E4 allant du nucléotide 32800 et se terminant au nucléotide 35826 de la séquence telle que divulguée dans la banque de donnée Genebank sous la référence M73260. 25. Une lignée de complémentation selon l'une des revendications 18 à 24, dans laquelle ledit élément de complémentation comprend, en outre, au moins une partie de la région E2 d'un adénovirus naturel. 26. Une lignée de complémentation selon la revendication 25, dans laquelle ledit élément de complémentation comprend l'ensemble du génome d'un adénovirus naturel à l'exception de la région d'encapsidation et de l'ITR 5' dudit adénovirus. -52 - 27. Une lignée de complémentation selon la revendication 26, dans laquelle ledit élément de complémentation comprend la partie du génome d'un adénovirus humain de type 5 allant du nucléotide 505 et se terminant au nucléotide 35826 de la séquence telle que divulguée dans la banque de donnée Genebank sous la référence M73260. 28. Une lignée de complémentation selon la revendication 27, dans laquelle ladite partie du génome d'un adénovirus humain de type 5, allant du nucléotide 505 et se terminant au nucléotide 35826 de la séquence telle que divulguée dans la banque de donnée Genebank sous la référence M73260, est placée sous le contrôle d'un promoteur non-adénoviral approprié. 29. Une lignée de complémentation selon l'une des revendications 18 à 28, dans laquelle ledit élément de complémentation comprend, en outre, un gène codant pour un marqueur de sélection. 30. Une lignée de complémentation selon la revendication 29, dans laquelle ledit gène codant pour un marqueur de sélection est constitué par le gène codant pour la puromycine acetyl-transférase. 31. Une lignée de complémentation selon la revendication 30, dans laquelle le gène codant pour la puromycine acetyl-transférase est placé sous le contrôle du promoteur adénoviral E2A. 32. Une lignée de complémentation selon l'une des revendications 18 à 31, constituée par une lignée cellulaire acceptable d'un point de vue pharmaceutique sélectionnée parmi les lignées Vero, BHK, A549, MRC5, WI38 et CHO. 33. Un procédé de préparation d'un adénovirus défectif selon l'une des revendications 1 à 16, selon lequel: on introduit ledit adénovirus défectif dans une lignée de complémentation selon l'une des revendications 18 à 32, -53 - on cultive ladite lignée de complémentation selon des conditions appropriées pour permettre la production desdits adénovirus défectifs, et on récupère lesdits adénovirus défectifs dans le surnageant de culture de ladite lignée. 34. Usage d'un adénovirus défectif selon l'une des revendications 1 à 16 d'une cellule eucaryote selon la revendication 17 ou d'une lignée de complémentation selon l'une des revendications 18 à 32, pour la fabrication d'un médicament destiné à prévenir ou traiter une maladie génétique ou virale. 35. Une composition pharmaceutique comprenant à titre d'agent thérapeutique ou prophylactique un adénovirus défectif selon l'une des revendications I à 16, d'une cellule eucaryote selon la revendication 17 ou d'une lignée de complémentation selon l'une des revendications 18 à 32 en association avec un support acceptable d'un point de vue pharmaceutique.