Brevet FR2697850A1 — publié le 19940513

NOUVEAUX POLYPEPTIDES AYANT UNE ACTIVITE DE RECEPTEUR OPIOlDE. ACIDES NUCLEIOUES CODANT POUR CES POLYPEPTIDES ET UTILISATIONS La présente invention concerne de nouveaux polypeptides et le matériel génétique permettant leur expression. Plus particulièrement, elle concerne de nouveaux polypeptides ayant une activité de récepteur opioide. Les récepteurs opioides sont connus depuis longtemps comme des récepteurs membranaires du système nerveux, médiant les effets analgésiques des alkaloides dérivés de l'opium. Des ligands endogènes de ces récepteurs et leurs précurseurs ont été caractérisés, et leur role dans la réponse à la douleur et au stress a été largement étudié (Akil et al., (1984) Annu. Rev. Neurosci. 7, 223-255). Par ailleurs, des études pharmacologiques ont révélé l'existence de trois sous-types de récepteurs opioides: les récepteurs mu (morphine), delta (enképhaline) et kappa (dynorphine). Ces mêmes études ont également montré que l'action inhibitrice de l'activité cellulaire de ces récepteurs était liée à l'activation de protéines G (Simonds, W.F. (1988) Endocrine Rev. 9, 200-212).Pour cette raison, ces récepteurs sont aujourd'hui classés dans la famille des récepteurs qui interagissent avec des protéines G, une classe de récepteurs possèdant sept domaines transmembranaires et englobant environ 80 % des récepteurs connus. Différents laboratoires ont essayé de cloner des gènes codant pour des récepteurs opioides. Notamment, une protéine liant les opioldes avec une sélectivité de type mu a été purifiée à partir de cerveau de boeuf et partiellement séquencée. Un ADNc a ensuite été isolé en utilisant des sondes nucléotidiques dérivées de cette séquence partielle. Cependant, la protéine déduite de cette séquence ne possède pas de domaine transmembranaire et présente une forte homologie avec la NCAM, une molécule d'adhésion (Schofield et al., (1989) EMBO J. 8, 489-495). Plus récemment, l'isolement d'un autre ADNc a été décrit (Xie et al., (1992) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 89, 4124- 4128), obtenu par clonage par expression. La banque d'ADNc était construite à partir de placenta humain, exprimant exclusivement le sous-type kappa, et elle a été criblée au moyen d'un peptide dérivé de la dynorphine par une technique d'enrichissement par affinité. Cependant, cette protéine possède une affinité relativement faible pour les ligands opioides, ne présente aucune spécificité de soustype, et semble enfin très similaire au récepteur à la neuromédine K. Enfin, tous les essais de clonage de récepteurs opioides par PCR basés sur les homologies avec les récepteurs couplés aux protéines G se sont révélés infructueux. La présente invention décrit pour la première fois le clonage de gènes codant peur des récepteurs opioides. La présente invention décrit également pour la première fois la séquence de récepteurs opioides et leur expression dans des cellules recombinantes. La présente invention permet ainsi une meilleure compréhension de la structure des récepteurs opioides, et d'étudier de manière plus fine leur mécanisme d'action. La présente invention permet également d'obtenir des récepteurs opioides de très grande pureté et en quantité élevée, permettant la réalisation d'études fonctionnelles et pharmacologiques, la fabrication d'anticorps, etc.L'invention permet aussi de préparer des fragments de récepteurs opioides de taille définie, ainsi que toutes sortes de dérivés des récepteurs opioldes. L'invention fournit également des cellules recombinantes exprimant des récepteurs opioides ou des fragments de récepteurs opioides, utilisables pour le criblages de ligands de ces récepteurs (agonistes, antagonistes, modulateurs, etc). Les séquences d'ADN de l'invention permettent également la réalisation de sondes, capables de détecter dans des échantillons biologiques toute irrégularité dans l'expression d'un récepteur opioide (non-expression, mutation, polymorphisme, etc).Ces sondes sont également utilisables pour le clonage par hybridation de tout autre ADNc codant pour un récepteur opioide, à partir de tissus d'origines diverses et notamment d'origine humaine, comme indiqué plus loin. Un premier objet de l'invention réside donc dans une séquence nucléotidique codant pour un polypeptide ayant une activité de récepteur opioide. Au sens de l'invention, récepteur opioide comprend notamment les sous-types delta, mu et kappa. Préférentiellement, l'invention a pour objet une séquence nucléotidique codant pour un polypeptide ayant une activité de récepteur opioide delta. Encore plus préférentiellement, la séquence nucléotidique selon l'invention est choisie parmi: (a) tout ou partie de la séquence nucléotidique SEQ ID n01 ou de son brin complémentaire, (b) toute séquence hybridant avec une séquence (a) et codant pour un polypeptide ayant une activité de récepteur opioide, et, (c) les séquences dérivées des séquences (a) et (b) en raison de la dégénérescence du code génétique. Un mode de réalisation tout particulier de l'invention est représenté par une séquence nucléotidique comprenant tout ou partie de la séquence nucléotidique SEQ ID n"l ou de son brin complémentaire. Les différentes séquences nucléotidiques de l'invention peuvent être d'origine artificielle ou non. 1l peut s'agir de séquences génomiques, d'ADNc, d'ARN, de séquences hybrides ou de séquences synthétiques ou semi-synthétiques. Ces séquences peuvent être obtenues par exemple par criblage de banques d'ADN (banque d'ADNc, banque d'ADN génomique) au moyen de sondes élaborées sur la base de la séquence SEQ ID n01. De telles banques peuvent être préparées à partir de cellules de différentes origines par des techniques classiques de biologie moléculaire connues de lthomme du métier.Les séquences nucléotidiques de l'invention peuvent également être préparées par synthèse chimique, notamment selon la méthode des phosphoramidites, ou encore par des méthodes mixtes incluant la modification chimique ou enzymatique de séquences obtenues par criblage de banques. Les séquences nucléotidiques de l'invention peuvent être utilisées pour la production des polypeptides opioides. Le terme polypeptide opioide désigne tout polypeptide ayant une activité de récepteur opioide, et tout fragment ou dérivé d'un tel polypeptide. Pour la production de polypeptides opioides, la partie codant pour ledit polypeptide est généralement placée sous le contrôle de signaux permettant son expression dans un hôte cellulaire. Le choix de ces signaux (promoteurs, terminateurs, etc) peut varier en fonction de l'hôte cellulaire utilisé. A cet effet, les séquences nucléotidiques de l'invention peuvent faire partie d'un vecteur, qui peut être à réplication autonome ou intégratif.Plus particulièrement, des vecteurs à réplication autonome peuvent être préparés en utilisant des séquences à réplication autonome chez l'hôte choisi. S'agissant des vecteurs intégratifs, ceux-ci peuvent être préparés par exemple en utilisant des séquences homologues à certaines régions du génome de l'hôte, permettant, par recombinaison homologue, l'intégration du vecteur. Les hôtes cellulaires utilisables pour la production des polypeptides opioides de l'invention par voie recombinante sont aussi bien des hôtes eucaryotes que procaryotes. Parmi les hôtes eucaryotes qui conviennent, on peut citer les cellules animales, les levures, ou les champignons. En particulier, agissant de levures, on peut citer les levures du genre Saccharomyces, Kluyveromyces, Pichia, Schwanniomyces, ou Hansenula. S'agissant de cellules animales, on peut citer les cellules COS, CHO, C127, NIH-3T3, etc. Parmi les champignons, on peut citer plus particulièrement Aspergillus ssp. ou Trichoderma ssp. Comme hôtes procaryotes, on préfère utiliser les bactéries suivantes E. coli, Bacillus, ou Streptomyces. Les séquences nucléotidiques de la présente invention sont également utilisables dans le domaine pharmaceutique, soit pour la réalisation de séquences antisens utilisables dans le cadre d'une thérapie génique, soit encore pour la réalisation de sondes permettant la détection, par des expériences d'hybridation, de l'expression de récepteurs opioides dans des échantillons biologiques et la mise en évidence d'anomalies génétiques (polymorphisme, mutations) ou d'expressions aberrantes. L'inhibition de l'expression de certains gènes par des séquences antisens s'est avérée être une stratégie prometteuse dans le contrôle de l'activité d'un gène. Les séquences antisens sont des séquences dont le produit de transcription est complémentaire du brin codant d'un gène donné, et est de ce fait capable d'hybrider spécifiquement avec l'ARNm transcrit, inhibant sa traduction en protéine. L'invention a ainsi pour objet les séquences antisens capables d'inhiber au moins partiellement la production de polypeptides opioides tels que définis précédemment. De telles séquences peuvent être constituées par tout ou partie des séquences nucléotidiques définies ci-avant. I1 s' agit généralement de séquences ou de fragments de séquences complémentaires de séquences codant pour des peptides de l'invention.De telles séquences peuvent être obtenues à partir de la séquence SEQ ID n"l, par fragmentation, etc, ou par synthèse chimique. Comme indiqué ci-dessus, l'invention permet également la réalisation de sondes nucléotidiques, synthétiques ou non, capables de s'hydrider avec les séquences nucléotidiques définies ci-avant qui codent pour des polypeptides opioides de l'invention, ou avec les ARNm correspondants. De telles sondes peuvent être utilisées in vitro comme outil de diagnostic, pour la détection de l'expression d'un récepteur opioide, ou encore pour la mise en évidence d'anomalies génétiques (mauvais épissage, polymorphisme, mutations ponctuelles, etc). Compte tenu des activités multiples des ligands endogènes des récepteurs opioides, les sondes de l'invention peuvent ainsi permettre d'identifier des affections neurologique, cardiovasculaire ou psychiatrique.Ces sondes peuvent également être utilisées pour la mise en évidence et l'isolement de séquences d'acides nucléiques homologues codant pour des polypeptides opioides tels que définis précédemment, à partir d'autres sources cellulaires et préférentiellement de cellules d'origines humaines. Bien que la présente demande soit plus particulièrement illustrée par un récepteur de type delta, les études biochimiques et immunologiques décrites dans la littérature indiquent clairement que les récepteurs opioides possèdent des homologies importantes (même poids moléculaires, réactivité croisée avec les mêmes anticorps, etc). Les sondes de l'invention comportent généralement au moins 10 bases, et elles peuvent comporter jusqu'à l'intégralité de la séquence SEQ ID n"l ou de son brin complémentaire. Préférentiellement, ces sondes sont, préalablement à leur utilisation, marquées. Pour cela, différentes techniques connues de l'homme du métier peuvent être employées (marquage radioactif, enzymatique, etc). Les conditions d'hybridation dans lesquelles ces sondes peuvent être utilisées sont indiquées dans les techniques générales de clonage ci-après ainsi que dans les exemples. L'invention a également pour objet tout polypeptide résultant de l'expression d'une séquence nucléotidique telle que définie précédemment. Préférentiellement, il s'agit d'un polypeptide comprenant tout ou partie de la séquence peptidique SEQ ID n" 2 ou d'un dérivé de celle-ci. Au sens de la présente invention, le terme dérivé désigne toute molécule obtenue par modification de nature génétique et/ou chimique de la séquence peptidique SEQ ID n" 2. Par modification de nature génétique et/ou chimique, on peut entendre toute mutation, substitution, délétion, addition et/ou modification d'un ou plusieurs résidus. De tels dérivés peuvent être générés dans des buts différents, tels que notamment celui d'augmenter l'affinité du peptide pour son(ses) ligand(s), celui d'améliorer ses niveaux de production, celui d'augmenter sa résistance à des protéases, celui d'augmenter et/ou de modifier son activité, ou celui de lui conférer de nouvelles propriétés pharmacocinétiques et/ou biologiques.Parmi les dérivés résultant d'une addition, on peut citer par exemple les polypeptides chimères comportant une partie hétérologue supplémentaire liée à une extrêmité. Le terme dérivé comprend également les polypeptides homologues au polypeptide SEQ ID n" 2, issus d'autres sources cellulaires et notamment de cellules d'origine humaine, ou d'autres organismes, et possédant une activité de même type. De tels polypeptides homologues peuvent être obtenus par des expériences d'hybridation comme décrit dans les exemples. Préférentiellement, les polypeptides de l'invention sont des polypeptides possédant la capacité de lier la morphine (récepteur type mu), l'enképhaline (récepteur type delta) ou la dynorphine (récepteurs type kappa). Encore plus préférentiellement, il s'agit de polypeptides possédant la capacité de lier l'enképhaline (récepteur type delta). Toujours selon un mode préféré, les polypeptides de l'invention sont susceptibles d'être reconnus par des anticorps reconnaissant la séquence peptidique SEQ ID nO 2 complète. De tels anticorps peuvent être générés par toute technique connue de l'homme du métier, en utilisant comme antigènes les polypeptides décrits dans la présente demande. Comme indiqué dans les exemples, ces polypeptides peuvent être exprimés dans différents types cellulaires pour former des récepteurs opioldes fonctionnels. Les polypeptides de l'invention peuvent être obtenus par expression dans un hôte cellulaire d'une séquence nucléotidique telle que décrite ci-dessus, par synthèse chimique, sur la base de la séquence SEQ ID n" 2 en utilisant les techniques connues de l'homme du métier, ou par une combinaison de ces techniques. Un autre objet de l'invention concerne les cellules recombinées capables d'exprimer à leur surface un polypeptide ayant une activité de récepteur opioide. Ces cellules peuvent être obtenues par introduction d'une séquence nucléotidique telle que définie ci-dessus, puis culture desdites cellules dans des conditions d'expression de ladite séquence. Les cellules recombinées selon l'invention peuvent être aussi bien des cellules eucaryotes que procaryotes. Parmi les cellules eucaryotes qui conviennent, on peut citer les cellules animales, les levures, ou les champignons. En particulier, s'agissant de levures, on peut citer les levures du genre Saccharomyces, Kluyveromyces, Pichia, Schwanniomyces, ou Hansenula. S'agissant de cellules animales, on peut citer les cellules COS, CHO, C127, NIH-3T3, etc. Parmi les champignons, on peut citer plus particulièrement Aspergillus ssp. ou Trichoderma ssp. Comme cellules procaryotes, on préfère utiliser les bactéries suivantes E.coli, Bacillus, ou Streptomyces. Les cellules ainsi obtenues peuvent être utilisées pour mesurer la capacité de différentes molécules à se comporter comme ligand ou comme modulateur de l'activité des récepteurs opioides. Plus particulièrement, elles peuvent ainsi être utilisées dans un procédé de mise en évidence et d'isolement de ligands ou de modulateur de l'activité des récepteurs opioides, et, plus préférentiellement, d'agonistes et d'antagonistes. Un autre objet de l'invention concerne donc un procédé de mise en évidence et/ou d'isolement de ligands des récepteurs opioides, selon lequel on réalise les étapes suivantes: - on met en contact une molécule ou un mélange contenant différentes molécules, éventuellement non-identifiées, avec une cellule recombinée telle que décrite ci-dessus exprimant à sa surface un polypeptide ayant une activité de récepteur opioide dans des conditions permettant l'interaction entre ledit polypeptide et ladite molécule dans le cas où celle-ci possèderait une affinité pour ledit polypeptide, et, - on détecte et/ou isole les molécules liées au dit polypeptide. Dans un mode particulier, ce procédé de l'invention est adapté à la mise en évidence et/ou l'isolement d'agonistes et d'antagonistes de l'enképhaline pour les récepteurs opioides delta. Un autre objet de l'invention concerne un procédé de mise en évidence et/ou d'isolement de modulateurs des récepteurs opioïdes, selon lequel on réalise les étapes suivantes: - on met en contact une molécule ou un mélange contenant différentes molécules, éventuellement non-identifiées, avec une cellule recombinée telle que décrite ci-dessus exprimant à sa surface un polypeptide ayant une activité de récepteur opioide, en présence du ligand endogène dudit récepteur, dans des conditions permettant l'interaction entre ledit polypeptide et son ligand, et, - on détecte et/ou isole les molécules capables de moduler l'activité du ligand sur ledit polypeptide. Dans un mode particulier, ce procédé de l'invention est adapté à la mise en évidence et/ou l'isolement de modulateurs de l'activité de l'enképhaline sur les récepteurs opioides delta. Un autre objet de l'invention concerne l'utilisation d'un ligand ou d'un modulateur identifié et/ou obtenu selon le procédé décrit ci-avant comme médicament. De tels ligands ou modulateurs peuvent en effet permettre de traiter certaines affections liées aux récepteurs opioldes. En particulier, les récepteurs opioides étant les médiateurs d'un effet analgésique, les agonistes de ces récepteurs peuvent être utilisés pour diminuer les sensations de douleur. Par ailleurs, ces récepteurs étant les médiateurs des effets des dérivés de l'opium, leurs antagonistes peuvent être utilisés dans le cadre d'un traitement de désintoxication. L'invention concerne également tout médicament comprenant comme principe actif au moins une molécule agissant sur un récepteur de l'invention. Préférentiellement la molécule est un ligand ou un modulateur identifié et/ou isolé selon le procédé décrit précédemment. D'autres avantages de la présente invention apparaîtront à la lecture des exemples qui suivent, qui doivent être considérés comme illustratifs et non limitatifs. Légende des figures Figure 1 : Courbe de liaison du 3H-DTLET aux membranes des cellules Cos-1 exprimant le récepteur K56. Les membranes ont été incubées avec des concentrations croissantes de ligand, avec ou sans 1 ,uM de naloxone (-). La liaison spécifique est représentée. L'encart représente l'analyse en Scatchard des résultats. Figure : Courbe de liaison du 3H-DTLET aux membranes des cellules Cos-1 exprimant le récepteur K56, en présence de concentrations croissantes de compétiteurs. Figure 3: Courbe de liaison du 3H-DTLET (1 nM) aux membranes des cellules Cos1 exprimant le récepteur K56, en présence de concentrations croissantes de compétiteurs. Table 1 : Profil pharmacologique du récepteur K56. Les résultats correspondent à des expériences de compétition pour la liaison du 3H-DTLET aux membranes des cellules Cos-1 exprimant le récepteur K56 de manière transitoire. Les valeurs d'IC5O (correspondant à la concentration en ligand nécessaire pour déplacer 50 % du 3H DTLET lié) ont été calculées expérimentalement et converties en Ki selon l'équation suivante: Ki = IC50/(1 + L/Kd) dans laquelle L est la concentration en 3H-DTLET et Kd est la constante de dissociation du 311-DTLET. Chaque valeur correspond à la moyenne de 3 expériences indépendantes. Techniques générales de clonage Les méthodes classiquement utilisées en biologie moléculaire telles que les extractions préparatives d'ADN plasmidique, la centrifugation d'ADN plasmidique en gradient de chlorure de césium, l'électrophorèse sur gels d'agarose ou d'acrylamide, la purification de fragments d'ADN par électroélution, les extractions de protéines au phénol ou au phénolchloeoforme, la précipitation d'ADN en milieu salin par de l'éthanoî ou de l'isopropanol, la transformation dans Escherichia coli, etc, sont bien connues de l'homme de métier et sont abondament décrites dans la littérature [Maniatis T. et al., "Molecular Cloning, a Laboratory Manual", Cold Spring Harbor Laboratory, Cold Spring Harbor, N.Y., 1982;Ausubel F.M. et al. (eds), "Current Protocols in Molecular Biology", John Wiley & Sons, New York, 1987]. Pour les ligatures, les fragments d'ADN sont séparés selon leur taille par électrophorèse en gels d'agarose ou d'acrylamide, extraits au phénol ou par un mélange phénoUchloroforme précipités à l'éthanol puis incubés en présence de l'ADN ligase du phage T4 selon les recommandations du fournisseur. Le remplissage des extrémités 5' proéminentes est effectué par le fragment de Klenow de RADON Polymérase I d'E.coli selon les spécifications du fournisseur. La destruction des extrémités 3' proéminentes est effectuée en présence de l'ADN Polymérase du phage T4 utilisée selon les recommandations du fabricant. La destruction des extrémités 5' proéminentes est effectuée par un traitement ménagé par la nucléase S1. La mutagénèse dirigée in vitro par oligodéoxynucléotides synthétiques est effectuée selon la méthode développée par Taylor et al. [Nucleic Acids Res. jî (1985) 8749-8764]. L'amplification enzymatique de fragments d'ADN par la technique dite de PCR Lolymérase-catalyzed Çhain Reaction, Saiki R.K. et al., Science 230 (1985) 1350-1354; Mullis K.B. et Faloona F.A., Meth. Enzym. 155 (1987) 335-350]. La vérification des séquences nucléotidiques est effectuée par la méthode développée par Sanger et al. [Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 74 (1977) 5463-5467]. Pour les expériences d'hybridation, les conditions de stringence sont basées sur Maniatis T. et al., précitée. 1. Isolement du récepteur opiolde delta de souris Cet exemple décrit l'isolement du clone K56 codant pour le récepteur opioide delta de souris par criblage d'une banque d'ADNc par clonage par expression. 1.1. Construction de la banque Une banque d'ADNc a été réalisée à partir de lthybridome NG108-15 (Klee, W.A., et Nirenberg, M. (1974) Proc. Natl. Acad. Sci. USA 71, 3474-3477) en utilisant le vecteur d'expression transitoire mammifère pCDM8 (Aruffo, A. et Seed, B. (1987) Proc. Natl. Acad Sci. USA 84, 8573-8577. Pour cela, les cellules NG10815 [fournies par B. Foucaud (URA 1836, Faculté de Pharmacie, Strasbourg, France)] ont été récoltées à 50 % de la confluence, l'ARN a été extrait de ces cellules par précipitation en présence de chlorure de lithium et d'urée (Auffray et al (1980) Eur. J. Biochem. 107, 303-314), et les ARN polyA ont été purifiés sur colonne d'oligo(dT) (Pharmacia). La banque d'ADNc a ensuite été construite chez E.coli dans le vecteur pCDM8 (fournit par B. Seed, Massachusetts General Hospital, USA) selon la technique décrite par Kieffer (1991, Gene 109, 115-119). Environ 300000 transformants ont été cultivés une nuit dans des boîtes de pétri (16 cm) à une densité de 3000 colonies par boîte. Les colonies ont ensuite été transférées en milieu sélectif LB. La moitié de la suspension obtenue a été conservée sous forme congelée à -800C en présence de glycérol 30 %, et le reste a été utilisé pour préparer l'ADN plasmidique, selon la technique de lyse alkaline (Sambrook, J., Fritsch, E.F. & BR Maniatis, T. (1989) Molecular Cloning: A Laboratory Manual (Cold Spring Harbor Lab., Cold Spring Harbor, NY), 2nd Ed.). Un dizième de i'ADN plasmidique de chaque lot a été transfecté indépendemment dans les cellules Cos-1 (ATCC Cri1650) en utilisant la technique au DEAE-dextran. La meilleure efficacité de transfection (jusqu'à 20 % de cellules transfectées) a été obtenue en suivant le protocole suivant : Les cellules Cos-1 monocouches ont été cultivées dans des boîtes de 6 cm à une densité de 2.105 cellules par boîte, dans du milieu DMEM (Dulbecco Modified Eagle Medium) en présence de 10 % de sérum de veau foetal (FCS) et sous 5 % de CO2.Après 16 heures à 370C, les cellules ont été lavées 2 fois dans un tampon phosphate (PBS, pH 7,4) et incubées 1 heure à 37"C avec une solution comprenant 1-10 g d'ADN, 0,25 mg/ml de DEAEdextran (Pharmacia), 10 mM de Tris-HCl, pH 7,4 dans 2 ml de DMEM. Les cellules ont ensuite été traitées avec 10 % de glycérol dans 2 ml de DMEM pendant 3 minutes, rapidement diluées avec 5 ml de PBS et lavées 2 fois avec du PBS. Finalement, les cellules ont été incubées 5 heures à 370C dans du milieu DMEM contenant 10 % de FCS et 0,1 mM de chloroquine, lavées 1 fois dans du milieu DMEM contenant 10 % de FCS puis cultivées pendant 72 heures dans ce milieu. 1.2. Criblage par expression Les cellules Cos-1 transfectées décrites en 1.1. ci-dessus ont été testées pour leur capacité à lier le peptide suivant : Tyr-D-Thr-Gly-Phe-Leu-Thr (DTLET) marqué au tritium (61 Ci/mmole, CEA, Saclay, France). L'utilisation d'un ligand ayant une activité spécifique faible dans un tel test de criblage n'avait encore jamais été décrite. Les cellules en monocouche ont été lavées 2 fois en présence de PBS supplémenté de 0,5 % de sérum-albumine de boeuf (BSA), et incubées 35 minutes à 37"C en présence de PBS supplémenté de 0,5 % de BSA, contenant 1 nM 3H DTLET (2ml), qui correspond au Kd des récepteurs natifs. Les boîtes ont été refroidies sur la glace pendant 5 minutes et les cellules lavées 4 fois avec du PBS supplémenté de 0,5 % de BSA glacé.Les cellules ont ensuite été solubilisées dans 1,5 ml de SDS 1 %, ajoutées à 7 ml de liquide de scintillation et comptées (LS6000SC, Beckman). Le fractionnement des lots positifs a été réalisé en diluant un aliquot du stock, congelé dans le glycérol, dans un milieu sélectif, puis en étalant la suspension sur des membranes de nitrocellulose déposées sur des plaques d'agar. Après culture une nuit, des fragments de membranes ont été découpés afin d'isoler les lots de colonies indépendantes. Ces différentes colonies ont été transférées dans 10 ml de milieu sélectif LB et cultivées jusqu'à une DO600nm de 0,5. Un aliquot a été congelé dans le glycérol et le reste a été utilisé pour préparer 1' ADN plasmidique et transfecter les cellules Cos-1, comme décrit ci-avant. Un premier lot positif a été détecté, qui produisait un signal dépassant le bruit de fond de 10%. Ce lot a été divisé en 40 lots de 250 clones. Ces lots ont été testés à nouveau pour leur capacité de lier le 3H-DTLET. Pour évaluer la spécificité du 3H-DTLET lié, les clones ainsi fractionnés ont été incubés en présence de naloxone froid, un antagoniste des opioïdes. Plusieurs clones produisent un signal dépassant le bruit de fond de 20 % et disparaissant en présence de naloxone. L'un d'entre eux a été sous-divisé 2 fois (40 lots de 30 clones puis 90 clones individuels), conduisant à un clone unique, désigné K56, conférant aux cellules Cos-l une forte activité de liaison du 3H-DTLET. Notamment, le signal obtenu est 6 fois supérieur au bruit de fond, sensible au naloxone et dépendant de la concentration en 3H-DTLET. 2. Etude structurale du Récepteur Opiolde delta porté par le clone K56 Le clone K56 contient un insert de 2,2 kb environ, dont la séquence a été déterminée sur les 2 brins, en utilisant la technique des didéoxynucléotides (kit sequenase, US Biochemicals). La séquence ainsi obtenue correspond à la séquence SEQ ID n 1. Elle montre que l'ADNc isolé porte une phase de lecture ouverte de 1174 pb codant pour une protéine de 371 acides aminés (SEQ ID n 2), de poids moléculaire calculé de 40810 daltons (le site d'initiation de la traduction a été attribué au codon ATG en position 59 sur cette ORF). Par ailleurs, l'analyse d'hydrophobicité montre que cette protéine porte 7 domaines hydrophobes transmembranaires (Tm), une particularité rencontrée chez les membres de la famille des récepteurs couplés à des protéines G. De plus, les résidus conservés chez ces protéines sont également présents dans la protéine K56, à savoir: - une proline dans les domaines Tm IV, V, VI et VII, - un tryptophane dans les domaines Tm IV et VI et dans la première boucle extracellulaire, - les séquences consensus GNxxV (Tm I); LAxAD (Tm 11); DRY (2ème boucle intracellulaire; et NPxxY (Tm VII) Par ailleurs, la protéine K56 possède un résidu Asp en position 128 qui est équivalent au résidu Asp 113 des récepteurs Fadrénergiques et qui pourrait donc être impliquée dans le site de liaison des ligands. La séquence de la protéine K56 a finalement été comparée avec les séquences d'autres protéines de la famille des récepteurs couplés à des protéines G, à savoir: - le récepteur 132-adrénergique, - le récepteur de la neuromédine K, - le récepteur de la rhodopsine, et - le récepteur du peptide N-formyl. L'homologie la plus importante obtenue est de 30 to, incluant 10 gaps. C'est l'homologie la plus forte obtenue avec les protéines de la banque Swissprot Data. 3. Etude pharmacologique du récepteur K56 Le plasmide K56 isolé dans l'exemple 1 a été utilisé pour transfecter des cellules Cos-1. Les membranes des cellules transfectées obtenues ont ensuite été préparées et testées pour leur capacité à lier certains ligands opioïdes marqués. Le plasmide K56 purifié sur chlorure de césium (plasmide pCDM8 contenant l'insert de 2,2 kb environ codant pour le récepteur opioide) a été utilisé (xx \i% par plaque de 10 cm) pour transfecter les cellules Cos-1 en utilisant la technique au DEAE-dextran. Le témoin est constitué par les cellules transfectées par le plasmide pCDM8. 72 heures après la transfection, les cellules recombinantes sont récoltées et les membranes sont préparées de la manière suivante : les culots cellulaires sont repris, à 4"C, dans 60 ml de tampon Tris-HCl 50 mM pH 7,4; EDTA 10 mM, homogénéisés et centrifugés à 1100 g pendant 10 minutes. Le culot est ensuite repris une seconde fois dans 30 ml du même tampon, homogénéisé et centrifugé. Les 2 surnageants sont réunis et centrifugés à 110 000 g pendant 15 minutes. Le culot membranaire est alors repris dans 5ml du même tampon, aliquoté et conservé à - 80 "C. Des expériences de liaison à saturation et de compétition ont ensuite été réalisées sur ces membranes en présence de différents ligands.Pour cela, les échantillons de membrane (15-30 ig de protéines) ont été incubés 30 minutes à 370C en présence de 3H-DTLET, avec ou sans compétiteur, dans un volume final de 1 ml de tampon Tris HCl 50 mM (pH 7,4); EDTA 10 mM. La réaction est ensuite stopée par filtration sous vide sur filtres Whatman GF/B, et rinçage 3 fois avec 3 ml du tampon froid. Les valeurs de Ki ont été obtenues en suivant l'équation de Cheng et Prussof: Ki = IC50 / (1 + L/Kd). La radioactivité a été mesurée avec un compteur . 3.1. Affinité du DTLET pour les cellules Cos-1 transfectées. L'affinité du DTLET pour les cellules Cos-1 transfectées a été déterminée dans les conditions opératoires générales décrites ci-dessus. Les membranes ont été incubées en présence de concentrations croissantes de 3H-DTLET, en l'absence liaison totale) ou en présence (liaison non spécifique) de Naloxone (-) à 10-6 M. La liaison spécifique correspond à la différence entre liaison totale et liaison non spécifique. Les résultats obtenus montrent qu'une liaison spécifique élevée est observée pour les membranes des cellules Cos-1 transfectées par le plasmide K56, alors qu'elle est négligeable pour les membranes des cellules témoin (cellules Cos-1 transfectées par le plasmide pCDM8) (voir figure 1). La liaison aux membranes des cellules NG 108-15 qui expriment naturellement le récepteur opioide delta est présentée à titre comparatif. L'analyse en Scatchard de la liaison spécifique montre la présence d'une seule classe de récepteurs, avec une constante de dissociation apparente Kd = 1,4 nM; et un Bmax compris entre 3,9 et 6,4 pmoles par mg de protéines selon les préparations membranaires (figure 1). Compte tenu de l'efficacité de transfection (environ 10 %), le niveau d'expression des polypeptides opioides de l'invention dans les cellules Cos-1 transfectées peut être estimé à 5.106 molécules I cellules. 3.2. Expériences de compétition. Pour les expériences de compétition, le 3H-DTLET a été utilisé à une concentration de 1 nM, en présence de concentrations croissantes de compétiteurs froids. Les compétiteurs froids utilisés sont les suivants: - DADLE: [D-Ala2, D-Leu5]-enképhaline, Sigma - DPDPE: [D-penicillamine2, D-penicillamine5]-enképhaline cyclique, Sigma - DAGO: [D-Ala2, MePhe4, Gly-ol5]-enképhaline, Sigma -U50488 : trans- )-3,4-dichloro-N-méthyl-N- (2- [l-pyrrolidinyl] cyclohexyl) benzeneacetamide, Sigma - Naloxone (+) et (-), - levorphanol, dextrorphan, - bremazocine - etonitazen Les récepteurs opioides sont très stéréosélectifs.Le levorphanol et le Naloxone (-) sont connus pour lier les récepteurs opioides avec une haute affinité, tant dis que les énantiomères dextrorphan et naloxone (+) respectivement, ne se lient pas, indépendemment du sous-type de récepteur étudié. Des expériences de compétition conduites avec le DTLET en présence des 2 paires de ligands montrent que (i) le naloxone (+ > n'est pas un compétiteur, (ii) 1 ,uM dextrorphan induit une légère inhibition, ce qui est en accord avec les données sur ce produit qui indiquent qu'il peut lier les récepteurs opioides, mais avec une affinité 1000 fois inférieure que le levorphanol; (iii) les 2 énantiomères (-) possèdent des constantes d'inhibition Ki correspondant à celles décrites dans la littérature pour un récepteur opioide 8 (29,5 nM pour le Naloxone (-) et 20,9 nM pour le levorphanol) (voir figure 2 et table 1). Par ailleurs, les expériences réalisées avec les autres ligands mentionnés montrent que (voir figure 3 et table 1): - les agonistes â, DADLE et DPDPE, ainsi que l'agoniste non-sélectif bremazocine sont les compétiteurs les plus efficaces, avec des valeurs de Ki de 6,2; 10,9 et 5,7 nM respectivement; - les agonistes Is etonitazen et DAGO sont des ligands faibles, avec des valeurs de Ki de 1800 et 5050 nM respectivement; et - l'agoniste x, U50488 est le compétiteur le moins efficace avec un Ki de 39100 nM. L'ordre d'efficacité des ces différents ligands confirme la classification du récepteur K56 comme récepteur opiolde delta. Ces résultats montrent par ailleurs que les cellules Cos-1 de l'invention sont bien capables d'exprimer des polypeptides opioides ayant des caractéristiques de liaison comparables aux récepteurs natifs. 4. Recherche de séquences homologues dans d'autres tissus La séquence nucléotidique SEQ ID n" 1 ou des fragments de celle-ci peut être utilisée pour la mise en évidence de séquences homologues à partir d'autres tissus. Pour cela, différentes techniques sont utilisables, telles que la PCR, l'hybridation in site., le Northern blot, etc. Plus particulièrement, pour la recherche par PCR, les ARN totaux de différents tissus étudiés sont préparés, en utilisant la technique décrite par Cathala et al. (DNA 2(4) (1983)). Les ARN sont ensuite soumis à une transcription inverse et à une amplification, en présence de transcriptase inverse, de polymérase Taq et des sondes dérivées de la séquence SEQ ID nO 1 appropriées. Les produits ainsi obtenus sont ensuite transférés sur filtres de nitro-cellulose et hybridés dans des conditions de stringence variables. Les séquences homologues mises en évidence lors de ces expériences peuvent évidemment être ensuite isolées et/ou amplifiées par les techniques classiques de biologie moléculaire. LISTE DE SEOUENCES (1) INFORMATION GENERALE: (i) DEPOSANT: (A) NOM: UNIVERSITE LOUIS PASTEUR (B) RUE: 11 rue Humann (C) VILLE: STRASBOURG (E) PAYS: FRANCE (F) CODE POSTAL: 67085 (ii) TITRE DE L' INVENTION: Nouveaux polypeptides ayant une activite de recepteur opioide, acides nucleiques codant pour ces polypeptides et utilisations. (iii) NOMBRE DE SEQUENCES: 2 (iv) FORME LISIBLE PAR ORDINATEUR: (A) TYPE DE SUPPORT: Tape (B) ORDINATEUR: IBM PC compatible (C) SYSTEME D' EXPLOITATION: PC-DOS/MS-DOS (D) LOGICIEL: PatentIn Release &num;1.0, Version &num;1 25 (OEB) (2) INFORMATION POUR LA SEO ID NO: 1: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 2216 paires de bases (B) TYPE: acide nucl,ique (C) NOMBRE DE BRINS: double (D) CONFIGURATION: lin,aire (ii) TYPE DE MOLECULE: ADNc (iii) HYPOTHETIQUE: NON (iii) ANTI-SENS: NON (vi) ORIGINE: (B) SOUCHE: Souris (vii) SOURCE IMMEDIATE: (B) CLONE: K56 (ix) CARACTERISTIQUE ADDITIONELLE: (A) NOM/CLE: CDS (B) EMPLACEMENT: 59..1174 (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE:SEQ ID NO: 1: CTCTAAAGGC TGGGTCCCTG CGCCCAGGGC GCACGGTGGA GACGGACACG GCGGCGCC 58 ATG GAG CTG GTG CCC TCT GCC CGT GCG GAG CTG CAG TCC TCG CCC CTC 106 Met Glu Leu Val Pro Ser Ala Arg Ala Glu Leu Gln Ser Ser Pro Leu 1 5 10 15 GTC AAC CTC TCG GAC GCC TTT CCC AGC GCC TTC CCC AGC GCG GGC GCC 154 Val Asn Leu Ser Asp Ala Phe Pro Ser Ala Phe Pro Ser Ala Gly Ala 20 25 30 AAT GCG TCG GGG TCG CCG GGA GCC CGT AGT GCC TCG TCC CTC GCC CTA 202 Asn Ala Ser Gly Ser Pro Gly Ala Arg Ser Ala Ser Ser Leu Ala Leu 35 40 45 GCC ATC GCC ATC ACC GCG CTC TAC TCG GCT GTG TGC GCA GTG GGG CTT 250 Ala Ile Ala Ile Thr Ala Leu Tyr Ser Ala Val Cys Ala Val Gly Leu 50 55 60 CTG CGC AAC GTG CTC GTC ATG TTT CGC ATC GTC CGG TAC ACC AAA TTG 298 Leu Gly Asn Val Leu Val Met Phe Gly Ile Val Arg Tyr Thr Lys Leu 65 70 75 80 AAG ACC GCC ACC AAC ATC TAC ATC TTC AAT CTG GCT TTG GCT GAT GCG 346 Lys Thr Ala Thr Asn Ile Tyr Ile Phe Asn Leu Ala Leu Ala Asp Ala 85 90 95 CTG GCC ACC AGC ACG CTG CCC TTC CAG AGC GCC AAG TAC TTG ATG GAA 394 Leu Ala Thr Ser Thr Leu Pro Phe Gln Ser Ala Lys Tyr Leu Met Glu 100 105 110 ACC TGG CCC TTT CGC GAG CTC CTG TGC AAG GCT GTG CTC TCC ATT GAC 442 Thr Trp Pro Phe Gly Glu Leu Leu Cys Lys Ala Val Leu Ser Ile Asp 115 120 125 TAC TAC AAC ATG TTC ACT AGC ATC TTC ACC CTC ACC ATG ATC AGC GTG 490 Tyr Tyr Asn Met Phe Thr Ser Ile Phe Thr Leu Thr Met Met Ser Val 130 135 140 GAC CGC TAC ATT GCT GTC TGC CAT CCT GTC AAA GCC CTG GAC TTC CGG 538 Asp Arg Tyr Ile Ala Val Cys His Pro Val Lys Ala Leu Asp Phe Arg 145 150 155 160 ACA CCA GCC AAG GCC AAG CTG ATC AAT ATA TGC ATC TGG GTC TTG GCT 586 Thr Pro Ala Lys Ala Lys Leu Ile Asn Ile Cys Ile Trp Val Leu Ala 165 170 175 TCA GCT GTC GGG GTC CCC ATC ATG GTC ATG GCA GTG ACC AAC CCC GGG 634 Ser Gly Val Gly Val Pro Ile Met Val Met Ala Val Thr Asn Pro Gly 180 185 190 ATG GTG CAG TGG TAT GCA TGC TCC AGT TCC CCA GTC CAG CTC GTA CTC 682 Met Val Gln Trp Tyr Ala Cys Ser Ser Ser Pro Val Gln Leu Val Leu 195 200 205 GAC ACT GTG ACC AAG ATC TGC GTG TTC CTC TTT GCC TTC GTG GTG CCG 730 Asp Thr Val Thr Lys Ile Cys Val Phe Leu Phe Ala Phe Val Val Pro 210 215 220 ATC CTC ATC ATC ACC GTG TGC TAT CGC CTC ATC CTA CTC CCC CTG CGC 778 Ile Leu Ile Ile Thr Val Cys Tyr Gly Leu Met Leu Leu Arg Leu Arg 225 230 235 240 AGC GTG CGT CTC CTC TCC GGT TCC AAC GAG AAC GAC CCC AGC CTC CGG 826 Ser Val Arg Leu Leu Ser Gly Ser Lys Glu Lys Asp Arg Ser Leu Arg 245 250 255 CGC ATC ACG CGC ATG GTG CTG GTG GTG GTG GGC GCC TTC GTG GTG TGC 874 Arg Ile Thr Arg Met Val Leu Val Val Val Gly Ala Phe Val Val Cys 260 265 270 TGG GCG CCC ATC CAC ATC TTC GTC ATC GTC TGG ACG CTG GTG GAC ATC 922 Trp Ala Pro Ile His Ile Phe Val Ile Val Trp Thr Leu Val Asp Ile 275 280 285 AAT CGG CGC GAC CCA CTT GTG GTG GCC GCA CTG CAC CTG TGC ATT GCG 970 Asn Arg Arg Asp Pro Leu Val Val Ala Ala Leu His Leu Cys Ile Ala 290 295 300 CTG GGC TAC GCC AAC AGC AGC CTC AAC CCG GTT CTC TAC GCC TTC CTG 1018 Leu Gly Tyr Ala Asn Ser Ser Leu Asn Pro Val Leu Tyr Ala Phe Leu 305 310 315 320 GAC GAG AAC TTC AAG CGC TGC TTC CGC CAG CTC TGT CGC ACG CCC TGC 1066 Asp Glu Asn Phe Lys Arg Cys Phe Arg Gln Leu Cys Arg Thr Pro Cys 325 330 335 GGC CGC CAA GAA CCC GGC AGT CTC CGT CGT CCC CGC CAG GCC ACC ACG 1114 Gly Arg Gln Glu Pro Gly Ser Leu Arg Arg Pro Arg Gln Ala Thr Thr 340 345 350 CGT GAG CGT GTC ACT GCC TGC ACC CCC TCC GAC GGC CCG GGC GGT GGC 1162 Arg Glu Arg Val Thr Ala Cys Thr Pro Ser Asp Gly Pro Gly Gly Gly 355 360 365 GCT GCC GCC TGACCTACCC GACCTTCCCC TTAAACGCCC CTCCCAAGTG 1211 Ala Ala Ala 370 AAGTGATCCA GAGGCCACAC CGAGCTCCCT GGGAGGCTGT GGCCACCACC AGGACAGCTA 1271 GAATTGGGCC TGCACAGAGG GGAGGCCTCC TGTGGGGACG GGGCCTGAGG GATCAAAGGC 1331 TCCAGGTTGG AACGGTGGGG GTGAGGAAGC AGAGCTGGTG ATTCCTAAAC TGTATCCATT 1391 AGTAAGGCCT CTCCAATGGG ACAGAGCCTC CGCCTTGAGA TAACATCGGG TTCTGGCCTT 1451 TTTGAACACC CAGCTCCAGT CCAAGACCCA AGGATTCCAG CTCCAGGAAC CAGGAGGGGC 1511 AGTGATGGGG TCGATGATTT GGTTTGGCTG AGAGTCCCAG CATTTGTGTT ATGGGGAGGA 1571 TCTCTCATCT TAGAGAAGAT AAGGGGACAG GGCATTCAGG CAAGGCAGCT TGGGGTTTGG 1631 TCAGGAGATA AGCGCCCCCT TCCCTTGGGG GGAGGATAAG TGGGGGATGG TCAACGTTGG 1691 AGAAGAGTCA AAGTTCTCAC CACCTTTCTA ACTACTCAGC TAAACTCGTT GAGGCTAGGG 1751 CCAACGTGAC TTCTCTGTAG AGAGGATACA AGCCGGGCCT GATGGGGCAG GCCTGTGTAA 1811 TCCCAGTCAT AGTGGAGGCT GAGGCTGGAA AATTAAGGAC CAACAGCCTG GGCAATTTAG 1871 TGTCTCAAAA TAAAATGTAA AGAGGGCTGG GAATGTAGCT CAGTGGTAGG GTGTTTGTGT 1931 GAGGCTCTGG GATCAATAAG ACAAAACAAC CAACCAACCA AAAACCTTCC AAACAACAAA 1991 ACCAACCCTC AAACCAAAAA ACTATGTGGG TGTCTCTGAG TCTGGTTTGA AGAGAACCCG 2051 CAGCCCTGTA TCCCTGTGGG GCTGTGGACA GTGGGCAGAA GCAGAGGCTC CCTGGATCCT 2111 GAACAAGGGC CCCAAAAGCA AGTTCTAAAG GGACCCCTGA AACCGAGTAA GCCTTTGTGT 2171 CAAGAAGTGG GAGTACAACC AGAAAGGTGG CTGAGTGCTT TAGAG 2216 (2) INFORMATION POUR LA SEO ID NO: 2: (i) CARACTERISTIQUES DE LA SEQUENCE: (A) LONGUEUR: 371 acides amin,s (B) TYPE: acide amin, (D) CONFIGURATION: lin,aire (ii) TYPE DE MOLECULE: prot,ine (xi) DESCRIPTION DE LA SEQUENCE:SEQ ID NO: 2: Met Glu Leu Val Pro Ser Ala Arg Ala Glu Leu Gln Ser Ser Pro Leu 1 5 10 15 Val Asn Leu Ser Asp Ala Phe Pro Ser Ala Phe Pro Ser Ala Gly Ala 20 25 30 Asn Ala Ser Gly Ser Pro Gly Ala Arg Ser Ala Ser Ser Leu Ala Leu 35 40 45 Ala Ile Ala Ile Thr Ala Leu Tyr Ser Ala Val Cys Ala Val Gly Leu 50 55 60 Leu Gly Asn Val Leu Val Met Phe Gly Ile Val Arg Tyr Thr Lys Leu 65 70 75 80 Lys Thr Ala Thr Asn Ile Tyr Ile Phe Asn Leu Ala Leu Ala Asp Ala 85 90 95 Leu Ala Thr Ser Thr Leu Pro Phe Gln Ser Ala Lys Tyr Leu Met Glu 100 105 110 Thr Trp Pro Phe Gly Glu Leu Leu Cys Lys Ala Val Leu Ser Ile Asp 115 120 125 Tyr Tyr Asn Met Phe Thr Ser Ile Phe Thr Leu Thr Met Met Ser Val 130 135 140 Asp Arg Tyr Ile Ala Val Cys His Pro Val Lys Ala Leu Asp Phe Arg 145 150 155 160 Thr Pro Ala Lys Ala Lys Leu Ile Asn Ile Cys Ile Trp Val Leu Ala 165 170 175 Ser Gly Val Gly Val Pro Ile Met Val Met Ala Val Thr Asn Pro Gly 180 185 190 Met Val Gln Trp Tyr Ala Cys Ser Ser Ser Pro Val Gln Leu Val Leu 195 200 205 Asp Thr Val Thr Lys Ile Cys Val Phe Leu Phe Ala Phe Val Val Pro 210 215 220 Ile Leu Ile Ile Thr Val Cys Tyr Gly Leu Met Leu Leu Arg Leu Arg 225 230 235 240 Ser Val Arg Leu Leu Ser Gly Ser Lys Glu Lys Asp Arg Ser Leu Arg 245 250 255 Arg Ile Thr Arg Met Val Leu Val Val Val Gly Ala Phe Val Val Cys 260 265 270 Trp Ala Pro Ile His Ile Phe Val Ile Val Trp Thr Leu Val Asp Ile 275 280 285 Asn Arg Arg Asp Pro Leu Val Val Ala Ala Leu His Leu Cys Ile Ala 290 295 300 Leu Gly Tyr Ala Asn Ser Ser Leu Asn Pro Val Leu Tyr Ala Phe Leu 305 310 315 320 Asp Glu Asn Phe Lys Arg Cys Phe Arg Gln Leu Cys Arg Thr Pro Cys 325 330 335 Gly Arg Gln Glu Pro Gly Ser Leu Arg Arg Pro Arg Gln Ala Thr Thr 340 345 350 Arg Glu Arg Val Thr Ala Cys Thr Pro Ser Asp Gly Pro Gly Gly Gly 355 360 365 Ala Ala Ala 370 TABLE 1 Préférence vis-à-vis PKi Ligand Préférence vis-à-vis IRI des sous-types Cos K56 NG 108-15 Bremazocin kH 8.25 # 0.12 8.75 DADLE #= > > > k 8.22#0.15 8.70 DPDPE #= > > > > k 7.73#0.48 8.30 Levorphanol > > k=# 7.68 + 0.07 nd Naloxone (-) > #=k 7.53#0.09 nd Etonitazen > > > # 5.75 6 DAGO > > # > k 5.21 + 0.17 5.65 U50488 k > > > > # 4.35#0.15 4.24 REVENDICATIONS 1. Séquence nucléotidique codant pour un polypeptide ayant une activité de récepteur opioide. 2. Séquence nucléotidique selon la revendication 1 caractérisée en ce qu'elle code pour un récepteur opioide delta. 3. Séquence nucléotidique selon la revendication 1 ou 2 caractérisée en ce qu'elle est choisie parmi: (a) tout ou partie de la séquence nucléotidique SEQ ID n" 1 ou de son brin complémentaire, (b) toute séquence hybridant avec une séquence (a) et codant pour un polypeptide ayant une activité de récepteur opioide, et, (c) les séquences dérivées des séquences (a) et (b) en raison de la dégénérescence du code génétique. 4. Séquence nucléotidique caractérisée en ce qu'elle comprend tout ou partie de la séquence nucléotidique SEQ ID n" 1 ou de son brin complémentaire. 5. Séquence nucléotidique selon les revendications 1 à 4 caractérisée en ce qu'elle est choisie parmi les séquences d'ADN génomique, d'ADNc, d'ARN, les séquences hybrides ou les séquences synthétiques ou semi-synthétiques. 6. Séquence selon l'une des revendications 1 à 5 caractérisée en ce que la partie codant pour ledit polypeptide est placée sous le contrôle de signaux permettant son expression dans un hôte cellulaire. 7. Polypeptide résultant de l'expression d'une séquence nucléotidique selon l'une quelconque des revendications précédentes. 8. Polypeptide comprenant tout ou partie de la séquence peptidique SEQ ID nO 2 ou d'un dérivé de celle-ci. 9. Sequence antisens capable d'inhiber au moins partiellement la production d'un polypeptide selon l'une des revendications 7 ou 8. 10. Sonde nucléotidique capable de s'hydrider avec une séquence selon la revendication 3 ou avec l'ARNm correspondant. 11. Utilisation d'une sonde selon la revendications 10 pour la détection de l'expression d'un récepteur opioide; ou pour la mise en évidence d'anomalies génétiques (mauvais épissage, polymorphisme, mutations ponctuelles, etc); ou pour identifier des affections neurologique, cardiovasculaire ou psychiatrique comme étant liées aux récepteurs opioides; ou encore pour la mise en évidence et l'isolement de séquences d'acides nucléiques homologues codant pour des polypeptides opioides. 12. Polypeptide selon les revendication 7 ou 8 caractérisé en ce qu'il possède une activité de récepteur opioide. 13. Cellule recombinée capable d'exprimer à sa surface un polypeptide selon l'une des revendications 7, 8 ou 12. 14. Cellule selon la revendication 13 caractérisée en ce qu'elle est choisie parmi les cellules eucaryotes ou procaryotes. 15. Procédé de mise en évidence et/ou d'isolement de ligands des récepteurs opioîdes, caractérisé en ce que l'on réalise les étapes suivantes: - on met en contact une molécule ou un mélange contenant différentes molécules, éventuellement non-identifiées, avec une cellule recombinée selon la revendication 13 exprimant à sa surface un polypeptide opioïde, dans des conditions permettant l'interaction entre ledit polypeptide et ladite molécule dans le cas où celleci possèderait une affinité pour ledit polypeptide, et, - on détecte et/ou isole les molécules liées au dit polypeptide. 16. Procédé selon la revendication 15 pour la mise en évidence et/ou l'isolement de ligands des récepteurs opioides delta. 17. Procédé de mise en évidence etlou d'isolement de modulateurs des récepteurs opioides, caractérisé en ce que l'on réalise les étapes suivantes: - on met en contact une molécule ou un mélange contenant différentes molécules, éventuellement non-identifiées, avec une cellule recombinée selon la revendication 13 exprimant à sa surface un polypeptide ayant une activité de récepteur opiolde, en présence d'un ligand dudit récepteur, dans des conditions permettant l'interaction entre ledit polypeptide et le ligand, et, - on détecte et/ou isole les molécules capables de moduler l'activité du ligand sur ledit polypeptide. 18. Ligand ou modulateur d'un polypeptide tel que défini dans les revendications 7, 8 et 12, susceptible d'être obtenu selon les procédés des revendications 15 à 17. 19. Utilisation d'un ligand ou modulateur identifié et/ou obtenu selon les procédé des revendications 15 à 17 comme médicament. 20. Médicament comprenant comme principe actif au moins une molécule agissant sur un polypeptide selon la revendication 12. 21. Médicament selon la revendication 20 caractérisé en ce que la molécule est un ligand ou un modulateur identifié et/ou isolé selon le procédé des revendications 15 à 17.