Brevet FR2701263A1 — publié le 19940812

La présente invention concerne une composition protéinique obtenue comme produit secondaire dans la production d'albumine à partir de plasma sanguin humain, son procédé d'obtention, la glycoprotéine qu'elle contient et l'utilisation de ladite glycoprotéine dans des agents de stabilisation de l'albumine et comme agent permettant la détection et/ou le dosage d'anticorps. On sait que, dans l'état de la technique, on effectue, pour obtenir des solutions d'albumine humaine, un fractionnement du plasma sanguin soit par la méthode de COHN (voir Cohn J. et Al, J. Amer. Chem. Soc, 72, 465-474-(1950)), soit par une méthode dérivée dans laquelle on effectue des traitements thermiques et éthanoliques successifs ou une méthode analogue dans laquelle on utilise un agent de précipitation autre que ltéthanol (notamment éther, sulfate d'ammonium, polyéthylène glycol ou acide caprylique). Selon la méthode de Cohn, qui est, en pratique, la plus utilisée, le plasma est refroidi à - 30 C puis réchauffé à - 2" C d'où il résulte un cryoprécipité contenant le facteur vm antihémophilique, le fibrinogène et la fibronectine.Le surnageant, dit "surnageant I", est séparé du précipité susmentionné; on abaisse son pH à 5,85 + 0,05 et on ajoute de l'éthanol jusqu'à ce que la concentration éthanolique soit de 19 % en volume, la température étant abaissée, au fur et à mesure de l'addition d'éthanol, jusqu'à - 5 C. On obtient ainsi un précipité, dit "précipité JI + III)", contenant notamment les gamma-globulines et un surnageant, dit "surnageant AI + ici)" contenant l'albumine et des impuretés.On reprend le surnageant ainsi obtenu et on augmente le taux d'alcool jusqu'à obtenir une concentration éthanolique de 40 % en volume, la température étant abaissée à environ - 8 C. On obtient ainsi un précipité, dit "précipité IV", et un surnageant, dit "surnageant IV", qui contient l'albumine à un degré de pureté d'environ 94 à 97 % en poids.Le surnageant IV sert de matière première pour les solutions d'albumine désirées, mais il contient une grande quantité d'éthanol selon une première technique, on peut dialyser directement le surnageant W contre du sérum physiologique mais il faut alors utiliser une très grande quantité d'eau et le procédé est donc lent et coûteux selon une autre technique, on abaisse le pH du surnageant IV à 4,80 + 0,05 ce qui fait précipiter l'albumine : on sépare ce précipité, dit "précipité V", et on le remet en solution dans du sérum physiologique, le reste de l'éthanol étant extrait par dialyse. Les solutions aqueuses obtenues après dialyse du "surnageant IV" ou du "précipité V" remis en solution contiennent de l'albumine et environ 4 % en poids, par rapport au poids total de matières protéiniques, d'autres protéines dites secondaires ou contaminantes et/ou de polymères. Selon la demande de brevet français n" 92-04 941, on sépare l'albumine des autres protéines par un procédé chromatographique en phase liquide dans lequel on fait passer après dialyse la solution aqueuse contenant l'albumine dans au moins une colonne de chromatographie dite "hydrophobe" remplie d'un matériau particulaire apte à retenir une partie des protéines autres que l'albumine; pour compléter la séparation, on propose également de faire passer la solution aqueuse d'albumine dans au moins une colonne de chromatographie d'affinité contenant un support particulaire neutre ou voisin de la neutralité chargé d'un composé polysulfaté.L'effluent obtenu par ce procédé est constitué par une solution d'albumine purifiée, la majeure partie des protéines secondaires étant fixées, soit sur la (les) colonne(s) de chromatographie hydrophobe, soit sur la (les) colonne(s) de chromatographie d'affinité. Selon un mode préféré de mise en oeuvre de ce procédé, on soumet à la chromatographie une solution aqueuse d'albumine à un pH compris entre 6,5 et 7,8 et à une concentration supérieure à t g/l et inférieure à 400 g/l. On choisit avantageusement, comme matériau particulaire apte à retenir les protéines contaminantes dans la chromatographie hydrophobe, un support particulaire neutre, dont les particules sont chargées d'un composé comportant des radicaux alkyle C3-Cg hydrophobes ; on peut choisir notamment, comme composé chargeant les particules du support, un composé comportant des radicaux butyle: le lit de remplissage est, par exemple, constitué du produit commercialisé par la société "MERCK" sous la dénomination commerciale "FRACTOGEL TSK BUTYL-650". La chromatographie d'affinité se fait, de préférence, sur gel de dextran sulfate.On choisit, de préférence, pour effectuer la chromatographie d'affinité et la chromatographie hydrophobe un matériau particulaire ayant une granulométrie de dimension moyenne inférieure à 300 Zm. Le débit de chromatographie est généralement compris entre 10 et 20 cm/heure et la température entre 2 et 250C. La chromatographie d'affinité peut être effectuée après ou, de préférence, avant la chromatographie hydrophobe. On a constaté, selon la présente invention, que l'on pouvait éluer les protéines secondaires fixées sur les lits de remplissage des colonnes de chromatographie susmentionnées et obtenir ainsi des compositions protéiniques utiles, notamment dans le domaine pharmaceutique. La présente invention a, par conséquent, pour objet un procédé d'obtention d'une composition aqueuse protéinique à partir du plasma sanguin humain dans lequel on soumet le plasma à des traitements successifs par action de la chaleur et par action d'un agent de précipitation pour aboutir, après séparation au moins partielle des facteurs vm et IX et des gamma globulines, à des solutions d'albumine contenant l'agent de précipitation, on sépare, notamment par dialyse, l'agent de précipitation des solutions obtenues pour obtenir une solution aqueuse brute d'albumine et on soumet ladite solution aqueuse brute d'albumine à au moins une chromatographie en phase liquide pour retenir au moins une partie des protéines secondaires autres que l'albumine, ladite chromatographie en phase liquide comportant une chromatographie d'affinité sur un support particulaire constitué de particules chargées d'au moins un composé comportant au moins un groupe sulfonique, caractérisé par le fait qu'après passage de la solution d'albumine, on soumet le support particulaire de chromatographie d'affinité précité à une élution et que l'on recueille en élution la composition protéinique désirée. L'élution est, de préférence, effectuée en augmentant la force ionique par passage d'une solution saline. La solution saline est, de préférence, une solution de NaCl, à une concentration au moins égale à 0,3 M, avantageusement de 2 M; elle est avantageusement précédée d'une opération de lavage. Le lavage du support de chromatographie d'affinité est effectué, notamment, à l'aide d'un tampon salin, de molarité égale à 0,16 mole/l, de préférence un tampon phosphaté constitué de phosphates mono- et disodique, notamment à 0,01 mole/l, et de chlorure de sodium, notamment à 0,15 mole/l, dans des proportions donnant un pH de 7,00 + 0,05. Le lavage est maintenu tant que la densité optique de l'effluent est supérieure à une valeur prédéterminée, par exemple 0,1 UDO (unité de densité optique). La solution obtenue par élution de la (des) colonne(s) de chromatographie d'affinité contient un mélange de protéines. La présente invention a aussi pour objet la composition protéinique ainsi obtenue. Cette composition contient une glycoprotéine ayant un poids moléculaire de 50 000 + 3 000 dalton après ou sans réduction par le 2mercaptoéthanol. La présente invention a également pour objet cette glycoprotéine appelée, pour la suite, glycoprotéine Dt. La glycoprotéine Dt constitue de 5 à 100 % en poids du contenu protéinique total de la composition obtenue selon le mode de préparation; généralement, l'élution permet d'obtenir une concentration pondérale comprise entre 0,05 g et 30 g de glycoprotéine Dt par litre d'éluat mais cette concentration peut être réduite par dilution ou augmentée par concentration de l'éluat. La glycoprotéine Dt présente les caractéristiques et propriétés données ci-après. Les 20 premiers acides aminés de sa région N-terminale ont été déterminés en particulier par microséquençage en phase gazeuse à l'aide d'un appareil "Applied Biosystems Inc, modèle 470" couplé à un analyseur de phénylrhéohydantoïne modèle 120 A (ABI): Gly-Arg-Thr-Cys-Pro-Lys-Pro-Asp-Asp-Leu-Pro-Phe-S er-Thre-Val Val-Pro-Leu-Lys-Thre. Cette séquence de 20 premiers acides aminés correspond à celle d'une protéine plasmatique identifiée, dont les fonctions ne sont pas certaines à ce jour : il s'agit de la B2 -glycoprotéine I décrite (1) dans l'article de J. LOZIER et coll. Proc. Natl. Acad. Sci. ISA Vol. 81, pages 36403644, Juin 1984 et (2) dans l'article T. KRISTENSEN et coll. FEBS Letters, Vol. 289, 1991, pages 183-186. La composition en acides aminés de la glycoprotéine Dt a été déterminée sur deux préparations différentes par deux laboratoires différents: a) la première préparation A a été traitée par hydrolyse acide dans HC1 5,7 M pendant 24 heures à 110 C avec un analyseur d'acides aminés "BECKMAN 6300" relié à un système "GOLD" pour interprétation, b) la seconde prépration B a également été analysée avec un analyseur d'acides aminés "BECKMAN 6300" après hydrolyse par HCl 6 N pendant 24 heures et 72 heures. Les résultats obtenus sont donnés dans le tableau I ciaprès, où ils sont comparés avec les résultats publiés dans J. LOZIER' et coll (1) et T. KRISTENSEN et coll (2). TABLEAU I GLYCOPROTEINE Dt B2-GLYCOPROTEINE Préparation A Préparation B Selon (1) Selon (2) Acides Hydrolyse 24 H. Hydrolyse 24 H Hydrolyse 72 H. % Nbre de % aminés de nombre résidus/ de nombre % nmoles % de Nbre nmoles % de Nbre de résidu moles de de résidu de nombre de résidu de résidu de résidu protéine Asp 9,68 6,637 8,961 6,092 9,071 8,9 28 8,723 Thr 7,89 6,000 8,101 5,574 8,299 8,3 27 8,411 Ser 5,01 4,609 6,223 3,827 5,698 5,8 20 6,231 Glu 8,37 6,130 8,276 5,340 7,951 7,3 24 7,477 Gly 7,62 5,550 7,493 5,382 8,014 7,1 23 7,165 Ala 5,91 4,490 6,062 3,911 5,823 5,2 17 5,296 Cys 1,59 3,640 4,914 3,497 5,207 6,7 22 6,854 Val 5,87 3,180 4,293 3,564 5,307 5,5 17 5,296 Met 1,08 0,757 1,022 0,826 1,230 1,2 4 1,246 Ile 3,95 2,275 3,072 2,618 3,898 4,0 13 4,050 Leu 5,78 4,405 5,947 3,841 5,719 5,2 18 5,607 Tyr 4,38 3,440 4,644 2,682 3,993 4,3 14 4,361 Phe 5,64 4,167 5,626 3,906 5,816 5,5 18 5,607 His 1,65 1,350 1,823 1,090 1,623 1,5 5 1,558 Lys 10,14 6,809 9,193 5,880 8,755 9,2 30 9,346 Trp 5 Arg 3,31 2,258 3,049 1,866 2,778 3,1 10 3,115 Pro 12,13 8,370 11,301 7,265 10,817 9,5 31 9,657 Elle est antigénique, c'est-à-dire détectée par la méthode ELISA ou Immuno-empreinte, par des anticorps de sujets humains, par exemple pour des sujets infectés par HBV, HIV, du syndrome de Gougerot-Sjögren; elle est également reconnue dans certaines conditions, en ELISA, par des anticorps monoclonaux spécifiques de la p 25/p 55 gag du virus HIV1 (Ac. Mo. RL4.72.1) et de la protéine antioncogène p 53 (Ac.Mo. 122) ; on peut donc utiliser la glycoprotéine Dt pour la caractérisation et le dosage des anticorps contre cette protéine chez des malades atteints de SIDA, d'hépatite B, de leucémies, du syndrome de Gougerot-Sjôgren, ou de myélomes. La méthode ELISA est, par exemple, décrite dans l'article de ENGVALL et coll. Immunochemistry 1971, 8, pages 871 à 879 et la méthode par Immuno-empreinte est décrite, par exemple, dans TOWBIN et coll Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1979, 76, pages 4350-4354. Elle inhibe la dénaturation de l'albumine à 60 C observée en turbidimétrie, de façon "dose dépendante" ; on peut donc l'utiliser pour stabiliser l'albumine, notamment lors de la tyndallisation. La glycoprotéine Dt peut être séparée des protéines secondaires avec lesquelles elle est mélangée dans la composition protéinique obtenue par élution de la colonne de chromatographie d'affinité, de la façon décrite ci-après : la composition est éluée du gel de dextran sulfate par une solution de NaCl au moins égale à 0,3 M, avantageusement voisine de 2 moles par litre ; l'éluat obtenu est dilué dans un tampon salin de façon à abaisser sa force ionique à moins de 0,2; la solution obtenue est soumise à une chromatographie sur gel phosphaté, puis la glycoprotéine fixée sur le gel phosphaté est éluée en augmentant la force ionique avec un tampon salin ayant, de préférence, une force ionique supérieure à 0,4. Le débit de la chromatographie sur gel phosphaté est, de préférence, compris entre 10 et 20 cm/heure et la température est, de préférence, comprise entre 0 et 400 C, de préférence 2 et 25 C, en conditions usuelles. L'invention a également pour objet un agent de stabilisation de l'albumine lors de la tyndallisation contenant la glycoprotéine Dt définie ci-dessus et un agent permettant la détection et/ou le dosage d'anticorps de sujets humains infectés par HBV, HIV, du syndrome de Gougerot-Sjögren ou de myélomes, par la méthode ELISA ou par Immuno-empreinte caractérisé par le fait qu'il contient la glycoprotéine définie cidessus. Pour mieux faire comprendre l'invention, on va décrire ciaprès, à titre d'exemple purement illustratif et non limitatif, un mode de préparation de la glycoprotéine Dt selon l'invention. On utilise, comme matière première de départ, un plasma humain fractionné selon le procédé décrit par KISTLER et NrrSCHMAN (Vox Sang. 7, 414424 (1962)), qui est une méthode dérivée de celle de COHN, les fractions de départ contenant l'albumine étant soit le surnageant IV, soit le précipité V. Lorsque l'on part du surnageant IV, qui comprend 40 % (en volume) d'éthanol et qui a un pH de 5,85 + 0,05, on dilue de moitié le surnageant avec une solution de NaCl à 7 g/l. Le pH est ajusté à 7,45 + 0,05 avec une solution de soude 1N. On préconcentre l'albumine jusqu'à 90 g/l dans une cassette d'ultrafiltration de type "Oméga" (Filtron) mise en oeuvre dans un système d'ultrafiltration "Minisette SS Cell NPT Cell" (Filtron Techn. Corp.). Cette cassette a une surface filtrante de 0,07 m2 et un seuil de rétention de 30 KDa. La circulation est assurée par une pompe péristaltique à une pression qui varie de 2 x 105 Pa au début de l'opération à 5 x 105 Pa vers la fin. Lorsque l'on a atteint la concentration de 90 g/l en albumine, on ajoute à la solution d'albumine une solution de NaCl à 9 g/l et on continue à dialyser à volume constant jusqu'à obtenir un taux d'éthanol inférieur à 0,1 % en volume. Lorsque l'éthanol a été ainsi éliminé, on poursuit la dialyse en concentrant la solution jusqu'à 200 g d'albumine par litre. On ajuste le pH à 7,10 + 0,05 avec une solution d'acide chlorydrique 1N. Lorsque l'on part du précipité V, on remet ledit précipité en suspension dans du sérum physiologique (solution de NaCl à 9 g par litre) en utilisant 4 litres de sérum physiologique par kilogramme de précipité. On filtre pour éliminer les grumeaux de précipité non remis en suspension au cours de l'agitation; on ajuste le pH à 7,45 + 0,05 avec une solution de soude 1N et on concentre la solution ainsi obtenue jusqu'à 90 g de protéines par litre en utilisant le même système de dialyse que précédemment décrit pour le surnageant IV. On poursuit alors la dialyse en rajoutant du sérum physiologique et en travaillant à volume constant jusqu'à obtenir un taux final d'éthanol inférieur à 0,1 % en volume.Lorsque l'éthanol a été ainsi éliminé, on poursuit la dialyse pour concentrer la solution jusqu'à environ 200 g de protéines par litre. On ajuste le pH à 7,10 + 0,05 avec une solution d'acide chlorhydrique 1N. La solution d'albumine ainsi préparée à partir du surnageant IV ou du précipité V est alors filtrée stérilement (filtre "Millex-GS" de 0,2 micron (Millipore)). La solution aqueuse brute d'albumine obtenue subit d'abord une chromatographie d'affinité. Cette chromatographie est réalisée dans une colonne de 50 ml (2,5 cm x 10 cm) (Biorad), chargée avec un matériau particulaire vendu par la société "SIGMA" sous la dénomination commerciale "DEXIRAN BEADS SULFATED". La colonne est préalablement équilibrée en faisant passer dans le lit 3 volumes de colonne de sérum physiologique. La solution d'albumine est alors envoyée sur cette colonne et l'effluent peut être récupéré pour la production d'albumine. Le déroulement de la chromatographie est suivi en mesurant la densité optique à 280 nm des fractions en sortie de colonne. Le débit de la colonne est de 16 cm/heure ; la chromatographie est effectuée entre 20 et 250 C. Après passage de l'albumine récupérée comme effluent, la colonne d'affinité est lavée avec un tampon salin, voisin de l'isotonicité, de préférence un tampon constitué de phosphates mono- et disodique, notamment à 0,01 mole/l, et de chlorure de sodium, notamment à 0,15 mole/l ayant un pH de 7,00 + 0,05 jusqu'à ce que la densité optique de l'effluent soit inférieure à 0,1. Les protéines fixées sur la colonne d'affinité sont alors éluées, en augmentant la force ionique, par passage d'une solution 2 M de Nazi. Le lavage et l'élution sont effectués à température ambiante, les débits de lavage et d'élution étant de 16 cm/h. On a effectué, sur la solution obtenue, une électrophorèse dénaturante SDS-Page. On a constaté la présence d'une bande diffuse correspondant à la présence d'une protéine ayant un poids moléculaire de 50 000 + 3 000 daltons après ou sans réduction par le 2mercaptoéthanol. La technique de coloration Schiff montre que cette protéine est une glycoprotéine. Après coloration du gel en bleu de Coomassie, dans cette expérience, l'étude de la surface des pics de densité optique montre que la composition contient 55 % en poids de glycoprotéine Dt par rapport aux protéines totales. La glycoprotéine Dt est ensuite séparée et purifiée de la façon suivante : la composition protéinique obtenue par élution de la (des) colonne(s) de chromatographie d'affinité à l'aide d'une solution saline de NaCl à 2 moles/litre, est diluée 5 fois dans un tampon constitué de phosphates mono- et disodique, notamment à 0,01 mole/litre, dans des proportions donnant un pH de 6,8 + 0,05. Elle subit alors une chromatographie sur gel phosphaté. Cette chromatographie est réalisée dans une colonne de 50 ml (2,5 cm x 10 cm) (Biorad), chargée avec un matériau particulaire vendu par la société "BIO-RAD" sous la dénomination commerciale "BIOGEL 1fr?". La colonne est préalablement équilibrée en faisant passer dans le lit 3 volumes de colonne de tampon constitué de phosphates mono- et disodique, notamment à 0,01 mole/litre, dans des proportions donnant un pH de 6,8 + 0,05. L'éluat protéinique de la précédente chromatographie, dilué, est alors envoyé sur cette colonne. La chromatographie est effectuée avec un débit d'environ 15 cm/heure à une température de 20 C. L'effluent est éliminé et le support chromatographique subit ensuite un lavage effectué à l'aide d'un tampon phosphaté, identique à celui ayant servi à équilibrer la colonne. Le lavage est maintenu tant que la densité optique de l'effluent est supérieure à une valeur prédéterminée, par exemple 0,1 UDO (unité de densité optique). La glycoprotéine Dt qui, dans ces conditions, se fixe sur le gel phosphaté, est alors éluée en augmentant la force ionique. L'opération d'élution est, de préférence, réalisée au moyen d'une solution de KCl ayant une concentration voisine de 1M. Cette solution d'élution est constituée de phosphates mono- et disodique, notamment à 0,01 mole/litre, dans des proportions donnant un pH de 6,8 + 0,05 et de KC1 1 mole/litre. Le déroulement de la chromatographie est suivi en mesurant la densité optique à 280 nm des fractions en sortie de colonne. Le débit d'équilibrage de la colonne, de charge, de lavage et d'élution est de 16 cm/h. La chromatographie est effectuée à 200 C. L'éluat est récupéré, puis dialysé, de préférence dans un tampon isotonique. En suivant le déroulement de la chromatographie, on constate que l'on peut charger au moins 0,5 g de glycoprotéine Dt par litre de lit de chromatographie. On a analysé par électrophorèse dénaturante SDS PAGE l'éluat obtenu du gel d'hydroxyapatite (BIoGEL Hure). On a constaté la présente d'une seule bande correspondant à la présence d'une protéine ayant un poids moléculaire de 50 000 + 3 000 et ce, après ou sans réduction par le 2-mercaptoéthanol. La pureté de cette préparation a été testée en chromatographie dite "HPLC" sur "FRACTOGEL TSK 3000 5W" (appareil Tosho) et l'on constate également la présence d'un seul pic protéique. La protéine ainsi isolée a les caractéristiques de compositions et séquences indiquées précédemment dans la présente description. REVENDICATIONS 1 - Procédé d'obtention d'une composition aqueuse protéinique à partir du plasma sanguin humain dans lequel on soumet le plasma à des traitements successifs par action de la température et par action d'un agent de précipitation pour aboutir, après séparation au moins partielle des facteurs vm et IX et des gamma globulines à des solutions d'albumine contenant l'agent de précipitation, on sépare l'agent de précipitation des solutions obtenues pour obtenir une solution aqueuse brute d'albumine et on soumet ladite solution aqueuse brute d'albumine à au moins une chromatographie en phase liquide pour retenir au moins une partie des protéines secondaires autres que l'albumine, ladite chromatographie en phase liquide comportant une chromatographie d'affinité sur un support particulaire constitué de particules neutres chargées d'au moins un composé comportant au moins un groupe polysulfaté, caractérisé par le fait qu'après passage de la solution d'albumine, on soumet le support particulaire de chromatographie d'affinité précité à une élution et que l'on recueille en élution la composition protéinique désirée. 2 - Procédé selon la revendication 1, caractérisée par le fait que l'élution est effectuée en augmentant la force ionique par passage d'une solution saline. 3 - Procédé selon la revendication 2, caractérisé par le fait que l'opération d'élution est réalisée au moyen d'une solution de NaCl. 4 - Procédé selon l'une des revendications 2 ou 3, caractérisé par le fait que l'opération d'élution est précédée d'une opération de lavage. 5 - Procédé selon la revendication 4, caractérisé par le fait que le lavage est effectué à l'aide d'un tampon salin voisin de l'isotonicité dans des proportions donnant un pH de 7,00 + 0,05. 6 - Procédé selon I'une des revendications 4 ou 5, caractérisé par le fait que le lavage est maintenu tant que la densité optique de l'effluent est supérieure à une valeur prédéterminée. 7 - Composition aqueuse protéinique obtenue par le procédé selon l'une des revendications 1 à 6. 8 - Glycoprotéine contenue dans la composition aqueuse protéinique selon la revendication 7 ayant un poids moléculaire de 50 000 + 3 000 dalton après ou sans réduction par le 2mercaptoéthanol. 9 - Composition selon la revendication 7, caractérisée par le fait qu'elle contient de 5 à 100 % en poids de la glycoprotéine de la revendication 8 par rapport au contenu protéinique total. 10 - Glycoprotéine selon la revendication 8, dans laquelle les 20 premiers acides aminés de la région N-terminale sont les suivants: Gly-Arg-Thr-Cys-Pro-Lys-Pro-Asp-Asp-Leu-Pro-Phe-S er-Thre-Val Val-Pro-Leu-Lys-Thre ll-Procédé de séparation de la glycoprotéine selon la revendication 10 à partir de la composition obtenue, selon l'une des revendications 1 à 6, par élution de la (des) colonne(s) de chromatographie d'affinité, caractérisé par le fait que la composition est traitée sur gel de dextran sulfate par une solution de NaCl au moins égale à 0,3 M par litre ; l'éluat obtenu est dilué dans un tampon salin de façon à abaisser sa force ionique au moins de 0,2 ; la solution obtenue est soumise à une chromatographie sur gel phosphatique, puis la glycoprotéine fixée sur le gel phosphatique est éluée en augmentant la force ionique avec un tampon salin de force ionique supérieure à 0,4. 12 - Procédé selon la revendication 11, caractérisé par le fait que le débit de la chromatographie sur gel phosphaté est compris entre 10 et 20 cm/heure, la température étant comprise entre 0 C et 40" C. 13 - Agent stabilisant l'albumine lors de sa tyndallisation, caractérisé par le fait qu'il contient la glycoprotéine selon la revendication 10. 14- Agent permettant la détection et/ou le dosage d'anticorps, de sujets humains infectés par HBV, HIV, du syndrome de Gougerot-Sjôgren ou de myélomes en ELISA ou Immuno-empreinte caractérisé par le fait qu'il contient la glycoprotéine selon la revendication 10.