Brevet FR2693904A1 — publié le 19940128

La présente invention est relative à une famille de substances à noyau porphinique, à leur procédé d'obtention à partir de plantes chlorophylliennes et notamment de cyanophycées, ainsi qu'à leurs applications en tant que produit cosmétique, notamment dans la lutte contre les effets du vieillissement naturel de la peau et en tant que produit thérapeutique dans certaines affections de la peau (couperose, inflammation, cicatrisation de la peau (brûlures notamment). La présente invention a pour objet une famille de substances à noyau porphinique de formules générales Ia et Ib suivantes dans lesquelles . R1 est un groupe méthyle ou un groupe CHO, . R21 R3, R5 et R6 sont des groupes alkyles inférieurs en Cl-2, . R4 représente un atome d'hydrogène ou un groupe phytyle, et . dans la formule Ib, X représente Mg, Cu, Ni, Fe, Zn, Mn ou Co, en tant que produits actifs sur la peau, à la fois en cosmétologie, dans la protection et la lutte contre les effets du vieillissement naturel de la peau et en dermatologie, dans certaines affections de la peau telles que l'inflammation, les blessures, les brûlures ou la couperose. Les produits définis aux formules Ia et Ib comprennent notamment : - les chlorophylles de formule Ib, dans lesquelles R1 représente un groupe CH3 (chlorophylle a) ou un groupe CHO (chlorophylle b), X représente un atome de Mg, R2 représente un groupe CH2CH3, R3, R5 et R6 sont identiques et représentent un groupe CH3 et R4 représente un groupe phytyle, - les chlorophyllides de formule Ib, dans lesquelles R1, R2, R3, R5, R6 et X ont la même signification que pour les chlorophylles et R4 représente un atome d'hydrogène, - les chlorophyllines de formule Ib, dans lesquelles R1 à R6 ont la même signification que pour les chlorophylles et X représente l'un des métaux suivants Cu, Ni, Fe, Zn, Mn, Co, - les phaéophytines de formule Ia, dans lesquelles R1 à R6 ont la même signification que pour les chlorophylles, et - les phaéophorbides de formule Ia, dans lesquelles R1 à R6 ont la même signification que pour les chlorophyllides. De tels composés sont généralement utilisés comme pigments colorants ou comme désodorisants. De manière inattendue, la Demanderesse a trouvé que l'ensemble de ces produits sont actifs sur la restructuration (notamment par leur effet sur la stimulation de la synthèse protéique des cellules) et la protection de la peau (notamment par leur effet anti-protéase), à la fois en cosmétologie (lutte contre les effets du vieillissement de la peau, protection solaire, restructuration des peaux abîmées par les W et d'autres agents agressifs et lutte contre les vergetures) et en dermatologie, dans certaines affections de la peau (inflammation due aux protéases, couperose, effets déstructurants dus aux corticoides, cicatrisation), notamment à des concentrations comprises entre 0,1 et 3 % (en poids). De manière avantageuse, de telles substances, à la fois lipophiles et hydrophiles pénètrent bien de la couche cornée jusqu'au derme et présentent un effet durable de protection et de restructuration de la peau, alors que les macromolécules habituellement utilisées pour lutter contre les effets du vieillissement naturel de la peau (acide hyaluronique, élastine, collagène ou ADN) ont l'inconvénient majeur d'avoir un effet superficiel et fugace, notamment en raison de l'absence de leur pénétration jusqu'au derme. Selon un mode de réalisation préféré de l'invention, l'ensemble de ces substances sont susceptibles d'être isolées à partir d'une plante chorophyllienne, de préférence à partir d'une cyanophycée. Selon une disposition préférée de ce mode de réalisation, l'ensemble de ces substances sont susceptibles d'être isolées à partir d'une Plectonema. Selon une modalité avantageuse de cette disposition, une souche Plectonema préférée a été déposée auprès de la Collection Nationale de Culture de Microorganismes de 1'INSTITUT PASTEUR, en date du 29 mai 1991 sous le n I-llOl. De telles substances trouvent application en cosmétologie et en dermatologie, sous la forme de compositions comprenant entre 0,1 et 3 % (en poids) de substances actives, éventuellement associées à d'autres substances actives et/ou excipients convenables. La présente invention a également pour objet à la fois un procédé d'obtention de l'ensemble de ces substances à noyau porphinique et un procédé d'obtention spécifique de certaines de ces substances, à partir des par ties vertes de plantes chlorophylliennes et notamment de cyanophycées fraîches lyophilisées. Le procédé d'obtention de l'ensemble de ces substances à noyau porphinique, comprend les étapes suivantes (1) au moins une macération à froid des parties de plantes chlorophylliennes et notamment de cyanophycées lyophilisées dans un solvant anhydre, pour l'obtention d'un extrait contenant à la fois les chlorophylles, les chlorophyllides, les phaéophorbides et les phaéophytines, et (2) séparation chromatographique de ces différentes substances en présence d'un solvant de polarité croissante. Le solvant anhydre est notamment choisi parmi le chloroforme, le chlorure de méthylène, l'éthanol absolu et le méthanol absolu et le solvant à polarité croissante est notamment choisi parmi l'acétone, le méthanol et l'éthanol plus ou moins aqueux. Selon un mode de mise en oeuvre avantageux de ce procédé, il comprend, préalablement à l'étape (1), un prétraitement de la plante chlorophyllienne, comprenant au moins une macération desdites plantes fraîches ou préalablement lyophilisées, dans un solvant très peu polaire, puis le séchage desdites plantes prétraitées. Ces plantes prétraitées sont directement utilisées pour l'étape (1) ci-dessus. On entend, au sens de la présente invention, par séchage, aussi bien un séchage classique (chaleur et aération) qu'un séchage par lyophilisation. Le solvant peu polaire est notamment choisi parmi l'éther de pétrole, le cyclohexane, l'hexane et le tétrachlorure de carbone. En variante, on peut séparer spécifiquement et sélectivement chacune des sous-familles de substances actives définies ci-dessus. Pour une séparation spécifique des chlorophyllides, le procédé comprend (1) au moins une macération de 24 h à une semaine des parties vertes de plantes chlorophylliennes et notamment de cyanophycées lyophilisées dans un solvant aqueux constitué de 20 à 60 % d'eau et d'un solvant miscible à l'eau choisi dans le groupe constitué par l'acétone, l'alcool éthylique et le méthanol, (2) séchage des plantes ainsi traitées, (3) au moins une macération à froid des plantes obtenues en (2) dans un solvant anhydre, pour l'obtention d'un extrait contenant essentiellement des chlorophyllides et (4) séparation chromatographique des chlorophyllides. Pour une séparation spécifique des phaéophorbides1 le procédé comprend soit (1) une macération pendant 24 heures à une semaine à température ambiante d'un extrait de chlorophyllide, telle qu'obtenu ci-dessus, dans un solvant organique auquel on a ajouté un acide miscible (acide formique, acide acétique ou autre acide à une concentration correspondant à un pH compris entre 2 et 4, en référence à une solution aqueuse) et (2) séparation chromatographique des phaéophorbides. soit (1) au moins une macération à température ambiante de 24 h à 48 h des parties vertes de plantes chlorophylliennes et notamment de cyanophycées lyophilisées dans un solvant miscible à l'eau tel que l'acétone, auquel on a ajouté un acide miscible (acide formique, acide acétique ou autre acide à une concentration correspondant à un pH compris entre 2 et 4, en référence à une solution aqueuse) (2) séchage des plantes ainsi traitées, (3) au moins une macération à froid des plantes obtenues en (2) dans un solvant anhydre, pour l'obtention d'un extrait contenant essentiellement des phaéophorbides et (4) séparation chromatographique des phaéophorbides. Pour une séparation spécifique des phaéophytines, le procédé comprend (1) une macération pendant une période de 24 h à une semaine, à température ambiante d'un extrait de chlorophylle, telle qu'obtenu ci-dessus, dans un solvant organique auquel on a ajouté un acide miscible (acide formique, acide acétique..., à une concentration correspondant à un pH compris entre 2 et 4, en référence à une solution aqueuse) et (2) séparation chromatographique des phaéophytines. Les procédés de séparation sélectif peuvent comprendre, préalablement à l'étape (1), un prétraitement de la plante chlorophyllienne, comprenant au moins une macération desdites plantes fraîches ou préalablement lyophilisées, dans un solvant très peu polaire, puis le séchage desdites plantes prétraitées. Les différentes substances obtenues peuvent être utilisées seules ou en mélange, selon l'effet recherché. La présente invention a également pour objet une souche de Plectonema, caractérisée en ce qu'elle comprend l'ensemble des substances actives sur la peau telles que définies ci-dessus. La souche, déposée auprès de la Collection Nationale de Culture de Microorganismes de 1'INSTITUT PASTEUR, comme indiqué plus haut, provient du griffon de la source Boussange de Vichy. Elle se présente sous forme de masses gélatineuses de couleur vert émeraude. Outre les dispositions qui précèdent, l'invention comprend encore d'autres dispositions, qui ressortiront de la description qui va suivre, qui se réfère à des exemples de mise en oeuvre du procédé objet de la présente invention. I1 doit être bien entendu, toutefois, que ces exemples sont donnés uniquement à titre d'illustration de l'objet de l'invention, dont ils ne constituent en aucune manière une limitation. EXEMPLE 1 : Effets de restructuration et de protection de la peau des substances conforme à l'invention. * Accroissement de la résistance du collagène aux effets de la collagénase - Mise en évidence On répartit dans quatre boîtes de Pétri de 8 cm de diamètre 20 ml d'une solution à 1 % d'agarose dans du tampon Tris pH 8,8, contenant en suspension 20 mg de collagène fibreux insoluble et 0, 0,1, 0,3 et 0,5 ml d'une solution à 5 % de produit à tester selon les boîtes, soient des concentrations de 0, 0,025 %, 0,075 %, 0,125 %. Comme la plupart des produits à tester ne sont pas solubles dans le tampon, on part d'une solution mère dans du diméthylsulfoxyde (DMSO). Cette répartition se fait à 45 C. Après solidification de l'agarose, on perfore 5 puits de 3 mm de diamètre dans le gel grâce à un emportepièce. Dans ces 5 puits, on place 50 1 d'une solution de collagénase pancréatique dans du tampon Tris pH 8,8 à une concentration de 10 mg/ml (3800 U/ml). Les boîtes de Pétri sont incubées 15 heures à 37 C, puis le gel est coloré par une solution à 0,25 % d'acide picrique à 0,25 % pendant 3 min, puis une solution de Rouge Sirius à 0,1 % pendant 5 min. L'excès de coloration est éliminé par lavage à l'eau. - Résultats PYOdUit testé 0,025 % 0,05 % 0,075 % Chlorophylle a, pureté : 65 % 5 % 22 % 28 % Chlorophyllide a, pureté : 74 3 % 34 % 65 % Phaéophytine a, pureté : 54 % 0 % 5 % 9 % Phaéophorbide a, pureté : 82 % 2 % On évalue l'action enzymatique en mesurant le diamètre des zones d'hydrolyse du collagène fibreux. Le groupe chlorophylle-chlorophyllide est le plus actif, ce qui suggère que la présence de magnésium dans la structure a une grande importance. * Effet d'inhibition de la collagénase - Mise en évidence On répartit dans quatre boîtes de Pétri de 8 cm de diamètre 20 ml d'une solution à 1 % d'agarose dans du tampon Tris pH 8,8, contenant en suspension 20 mg de collagène fibreux insoluble. Cette répartition se fait à 45 C. Après solidification de l'agarose, on perfore 5 puits de 3 mm de diamètre dans le gel grâce à un emportepièce. Dans ces 5 puits, on place 25 Fl d'une solution de collagénase pancréatique dans du tampon Tris pH 8,8 à des concentrations de : 10 mg/ml (3800 U/ml) et 25 1 d'une solution de la substance à tester dans le même tampon à une concentration de 4 %, 3 %, 2 %, 1 % et 0 %. Comme la plupart des produits à doser ne sont pas solubles dans le tampon, on part d'une solution mère dans du diméthylsulfoxyde. Les boîtes de Pétri sont incubées 15 heures à 37 C, puis le gel est coloré par une solution à 0,25 % d'acide picrique à 0,25 % pendant 3 min, puis une solution de Rouge Sirius à 0,1 % pendant 5 min. L'excès de coloration est éliminé par lavage à l'eau. - Résultats Produit testé 1 % 2 % 3 % 4 % Chlorophylle a, pureté : 65 % 2% 3% 3% 4% Chlorophyllide a, pureté : 74 ! 3 % 6 % 8 % 9 % Phaéophytine a, pureté : 54 % 0 % 0 % 0 % 2 % Phaéophorbide a, pureté : 82 % 2 % 2 % 2 % 6 % Dans ce test, les substances les plus performantes sont les mêmes que dans le test précédent (chlorophylle-chlorophyllide) de plus, ces substances présentent un effet de renforcement de la résistance du collagène contre les effets de la collagénase, alors que l'enzyme elle-même est peu atteinte par ces substances * Inhibition de l'élastase pancréatique - Mise en évidence L'activité de l'élastase pancréatique est déterminée sur un substrat synthétique. On constate que les produits décrits ci-dessus ont un effet sur cette enzyme alors que le substrat est un dérivé de peptide de faible poids moléculaire : le N succinyl N ala-ala-ala-p nitroanilide. Solution substrat : solution du substrat cidessus à 1 % dans du tampon phosphate pH 7,6. Solution enzymatique : élastase pancréatique à (1000 U/ml) dans le tampon pH 7,6. Solvant DMSO à 50 % dans de l'eau distillée. Solution à tester : substance à tester en solution dans le solvant à 0,1 %. Dans un premier tube à essai (blanc), on place 2,2 ml de tampon pH 7,6 0,3 ml de solution enzymatique 0,5 ml de solvant. Dans un deuxième tube à essai (essai), on place 1 ml de solution substrat 1,2 ml de tampon pH 7,6 0,3 ml de solution enzymatique 0,5 ml de solution à tester. Dans un troisième tube à essai, on place 1 ml de solution substrat 1,2 ml de tampon pH 7,6 0,3 ml de solution enzymatique 0,5 ml de solvant. On mesure la D.O. de la solution essai contre la solution blanc à 410 nm. On note la valeur toutes les 30 secondes pendant 3 minutes. On réalise la même mesure pour la solution témoin. L'activité de l'enzyme est définie par la vitesse d'augmentation de D.O. du témoin. L'activité de la solution inhibitrice à tester se définit comme une diminution relative de l'activité de l'enzyme. - Résultats Produit testé Chlorophylle a, pureté : 65 % 12 % Chlorophyllide a, pureté : 74 % 28 % Phaéophytine a, pureté : 54 % 9 % Phaéophorbide a, pureté : 82 % 17 % Dans ce test, qui est un test relatif à une inhibition enzymatique vraie, puisque le substrat est artificiel et de structure assez éloignée des substrats naturels de l'enzyme, on constate que les molécules les plus actives en tant qu'inhibiteurs, sont celles dépourvues de radical phytile ; la présence du magnésium n'apparaît pas comme essentielle, pour cette fonction particulière, d'où l'intérêt de compositions comprenant plusieurs des substances actives définies ci-dessus. * Effet des substances décrites sur la synthèse des protéines totales par des fibroblastes en culture (restructuration) : - Mise en évidence Une étude de cytotoxicité est réalisée au préalable pour déterminer les concentrations maximales de test des différentes substances concernées. Cellules utilisées : fibroblastes humains MRC5, au 28ème passage. Les cellules sont ensemencées sur une plaque à 96 puits à raison de 2.105 cellules par puits environ et mises en culture dans du milieu minimum de Eagle (MEM) additionné de 1 % de glutamine 200 mM, 1 % de solution de vitamines, 100 U/ml de pénicilline, 100 U/ml de streptomycine et 2 % de sérum de veau foetal. La solution à tester est ajoutée à raison de 100 1 par puits, à la concentration de 50 Fg/ml. Les cellules sont incubées à 37 C sous 5 % d'atmosphères de CO2. On prélève le milieu de culture après 48, 72, 96 et 120 heures de culture. Les protéines totales synthétisées sont déterminées après coloration des surnageants par le bleu de Coomassie et mesure de la D.O. à 595 nm. L'augmentation de la synthèse protéique est mesurée par rapport au témoin (solvant de la substance à tester). - Résultats Produit testé Chlorophylle a, pureté : 65 % 15 % Chlorophyllide a, pureté : 74 % 23 % Phaéophytine a, pureté : 54 % 4 % Phaéophorbide a, pureté : 82 % 1 % Le groupe chlorophylle-chlorophyllide est le plus actif, ce qui montre l'importance du magnésium dans la structure, pour cette activité. * Effet antiradicalaire Deux techniques peuvent être utilisées pour mettre en évidence l'effet antiradicalaire in vu trio des produits concernés. - Mise en évidence par la méthode enzymatique Substrat : EDTA : 0,05 g Xanthine : 0,0125 g Cytochrome c : 0,02 g Tampon phosphate pH 7,5 : 200 ml. Enzyme : xanthine oxydase à 1 % dans le tampon. Solvant : DMSO à 50 % dans de l'eau distillée. Substance antiradicalaire : 0,5 % dans le solvant. Solution blanc : substrat 2 ml tampon pH 7,5 : 0,5 ml solvant : 0,5 ml Solution témoin : substrat : 2 ml solution enzymatique : 0,5 ml solvant : 0,5 ml. Solution essai : substrat : 2 ml solution enzymatique : 0,5 ml solution antiradicalaire (substance selon l'invention) : 0,5 ml. On mesure la D.O. de la solution témoin contre la solution blanc à 550 nm toutes les 30 secondes pendant 3 min. Puis on mesure la D.O. de la solution essai contre la solution blanc toutes les 30 secondes pendant 30 min. On détermine l'effet antiradicalaire comme le rapport des deux vitesses mesurées. - Résultats Produit testé Chlorophylle a, pureté : 65 % 75 % Chlorophyllide a, pureté : 74 % 61 % Phaéophytine a, pureté : 54 % 38 % Phaéophorbide a, pureté : 82 % 21 % Dans ce test, on constate une relative homogénéité des actions des différentes substances, contrairement aux tests précédents ; ici, c'est donc la structure commune qui doit jouer le rôle principal dans cette action. - Mise en évidence par la méthode chimique Réactif : 1,1-diphényl-2-picrylhydrazyle 2,5 mg dans 100 ml de méthanol. Solvant des substances antiradicalaires méthanol. Solution antiradicalaire : 2 % dans du méthanol. Ce produit est un radical libre stable pouvant être dégradé par des substances antiradicalaires. On réalise un blanc pour le témoin et un blanc pour l'essai Blanc témoin : tampon phosphate pH 7 : 1,5 ml méthanol : 3 ml Témoin : solution réactif : 3 ml tampon phosphate pH 7 : 1,5 ml Blanc essai : tampon phosphate pH 7 : 1,35 ml méthanol : 3,15 ml Essai : solution réactif : 3 ml tampon phosphate pH 7 : 1,35 ml solution d'antiradicalaire : 0,15 ml. On agite à 25 C pendant 5 min. Puis on extrait par 4 ml de toluène pendant 30 secondes. On filtre sur un papier séparateur de phases et on lit la D.O. de la solution de toluène à 519 nm contre la solution de toluène obtenue pour le blanc correspondant. On calcule le pourcentage de réactif disparu. - Résultats Produit testé Chlorophylle a, pureté : 65 % 84 % Chlorophyllide a, pureté : 74 % 83 % Phaéophytine a, pureté : 54 % 20 % Phaéophorbide a, pureté : 82 % 33 % Le groupe chlorophylline-chlorophyllide est le plus actif, ce qui indique que la présence du magnésium dans la structure, a une grande importance, contrairement au test précédent. EXEMPLE 2 : Procédé d'obtention des substances actives. I- Obtention de l'ensemble des substances actives. A. On fait macérer trois fois successivement 10 g d'algues lyophilisées dans 200 ml d'éther de pétrole à +4 C, pour éliminer différentes parties lipidiques et notamment les carotènes. Les résidus d'évaporation des macérations sont éliminés. L'algue est alors séchée à l'obscurité et elle est soumise à trois macérations successives dans 200 ml d'acétone à +4 C. Les solutions acétoniques sont alors réunies et évaporées à sec sous pression réduite à +20'C. Le résidu obtenu est de 830 mg. 100 mg de ce résidu sont alors redis souks dans 1 ml d'acétone et déposées en ligne sur une plaque de gel de silice préparative 20 X 20 cm de 0,5 mm d'épaisseur. On réalise le développement du chromatogramme sur 15 cm dans le solvant Benzène 60 Dichlorométhane 15 Acétone 2 Méthanol 1 Les quatre composants chlorophylliens principaux se situent aux Rf suivants Chlorophylle a 0,68 Chlorophyllide a 0 Phaéophytine a 0,52 Phaéophorbide a 0,12 Les tâches sont visibles à la lumière naturelle. Elles sont séparées de la plaque par grattage et reprises par 5 ml d'acétone. Après filtration, l'acétone est évaporée à sec sous pression réduite. On obtient Chlorophylle a 5 mg Chlorophyllide a 22 mg Phaéophytine a 2 mg Phaéophorbide a 1,5 mg B. Autre procédé de préparation On fait macérer trois fois successivement 1000 g d'algues lyophilisées dans 20 1 d'éther de pétrole à +4 C, pour éliminer différentes parties lipidiques et notamment les carotènes. Les résidus d'évaporation des macérations sont éliminés. L'algue est alors séchée à l'obscurité et elle est soumise à trois macérations successives dans 20 1 d'acétone à +4 C. Les solutions acétoniques sont alors réunies et évaporées à sec sous pression réduite à +20'C. Le résidu obtenu est de 80 g environ, soit un rendement approximatif de 8 %. Le résidu acétonique est alors repris par 500 ml d'acétone et mélangé à 200 g de silice 60 pour chromatographie. L'acétone est alors évaporée sous pression réduite à +20'C jusqu'à ce que la silice soit complètement sèche. On place alors cette silice, sur laquelle on a fixé l'extrait acétonique, sur une colonne de chromatographie de 50 cm de long et de 20 cm de diamètre remplie de silice 60 dans du chloroforme. Le dépôt est effectué de fa çon à ce que la jonction entre silice chargée et silice pure soit parfaitement plane. On place ensuite sur le sommet de la silice un disque de papier filtre de 20 cm de diamètre et des billes de verre pour le maintenir. On élue alors par un gradient linéaire de chloroforme acétone à un débit de 10 ml par minute à raison d'une augmentation de la proportion d'acétone de 1 % par minute. On obtient donc 100 % d'acétone en 100 minutes. Les différentes fractions colorées éluées sont analysées en chromatographie sur couche mince. On peut ainsi recueillir la chlorophylle a, la phaéophytine a, la phaéophorbide a et la chlorophyllide a. On obtient ainsi 6,2 g de chlorophylle a, 28 g de chlorophyllide a, 1 g de phaéophytine a et 2,2 g de phaéophorbide a. II- Obtention sélective des différentes substances actives. - Les chlorophyllides peuvent être produites plus abondamment par macération préalable de 48 heures de l'algue dans du méthanol aqueux à 60 %. Le procédé décrit en A ou en B est ensuite réalisé sur l'algue ainsi traitée et séchée. - Les phaéophorbides peuvent être produites plus abondamment par traitement pendant une période de 48 heures à température ordinaire de l'algue par une solution acétonique contenant 2 % d'acide formique. Le procédé décrit en A ou en B est ensuite réalisé sur l'algue ainsi traitée et séchée. - L'obtention des phaéophytines peut être réalisée par traitement pendant une période de 24 heures à une semaine à température ordinaire d'une solution de chlorophylle dans un solvant organique auquel on a ajouté un acide miscible tel que l'acide formique, l'acide acétique ou autre acide à une concentration correspondant à un pH de 2 à 4 environ, si le même acide était placé en solution aqueuse Préalablement, ces plantes peuvent être prétraitées par au moins une macération des dites plantes fraîches ou préalablement lyophilisées, dans un solvant très peu polaire, puis le séchage desdites plantes prétrai tées. EXEMPLE 3 : Exemples de formulation cosméto -dermatologiques contenant les substances conformes à l'invention. Pour chaque formule, on peut admettre que la concentration globale en produit actif quel qu'il soit est comprise entre 0,1 à 3 % en poids. * Crème - Mélange de glycérides partiels, d'alcool gras, d'ester cireux et d'alcools gras éthoxylés.... 10 - Myristate d'isopropyle 8 - Huile de vaseline fluide 3 - Mélange de cyclométhicone et de diméthicone 3 - Glycérine 10 - Mélange de polyacrylamide, d'alcool gras éthoxylé et d'isoparaffine 1 - Mélange de Nipa esters (28 %) dans du phénoxy éthanol 0,5 - Parfum 0,2 - Soude à 1N 0,6 - Chlorophyllide a 1 - Eau désionisée Q.S.P. 100 * Lait - Glycéryl stéarate 8 - Monostéarate de glycérine de polyoxyéthylène 3 - Myristate d'isopropyle 8 - Stéarate d'isooctyle 2 - 2-octyl dodécanol 5 - Mélange de cyclométhicone et de diméthicone 3 - Glycérine 5 - Mélange de Nipa esters (28 %) dans du phénoxy éthanol 0,5 - Parfum 0,2 - Soude à 1N 0,5 - Extrait acétonique avant chromatographie 0,5 tel que décrit dans le protocole précédent - Eau désionisée Q.S.P. 100 * Lotion - 2-hydroxyalcoxylate d'alcool gras 2 - Polyolester d'acide gras 2 - Glycérine 3 - Alcool éthylique à 96 % 20 - Hydroxyéthylcellulose 0,6 - Parfum 0,3 - Chlorophylle a 0,2 - Eau désionisée Q.S.P. 100 * Gel - Acide polyacrylique réticulé 0,5 - 2-hydroxyalcoxylate d'alcool gras 2 - Polyolester d'acide gras 2 - Glycérine 2 - Lessive de soude à 35 % 0,43 - Mélange de Nipa esters (28 t) dans du phénoxy éthanol 0,5 - Parfum en conformité avec les normes IFRA-RIFM 0,2 - Extrait brut acétonique 3 tel que décrit dans le protocole précédent - Eau désionisée Q.S.P. 100 EXEMPLE 4 :Souche de Plectonarna Sp. dénommée Vyl, conforme à l'invention : aspect, composition et méthode de culture La souche axénisée (élimination de tout contaminant bactérien) se présente sous forme de masses gélatineuses de couleur vert émeraude et peut être conservée de différentes façons * Conservation dans l'azote liquide la souche est simplement immergée sans précaution particulière dans l'azote liquide dans un tube adapté. * Conservation en culture sur milieu liquide - Composition du milieu NaNO3 1,5 g/l KH2PO4 .3H20 0,04 g/l MgSO4.7H20 0,075 g/l CaC12.2H2O 0,036 g/l Acide citrique 0,006 g/l Citrate d'ammonium-fer (III) 0,006 g/l Magnésium-Titriplex.2H2O 0,001 g/l Solution de trace de métaux (cf. ci-dessous) 1 ml/l Hydrolysat de caséine 0,25 g/l Eau désionisée q.s. 1000 ml pH après stérilisation 7,4 - Composition de la solution de traces de métaux H3BO3 2,86 g/l MnC12.4H20 1,81 g/l ZnSO4.7H2O 0,222 g/l Na2MoO4. 2H2O 0,390 g/l CuSO4 . 5H20 0,079 g/l La culture doit être aérée constamment par une agitation douce et éclairée par des rampes lumineuses fluorescentes de type lumière du jour à raison de 10 FE.m2/s en alternance jour-nuit (12-12). La température de culture peut être comprise entre 20'C et 45 C. * Conservation en culture sur milieu solide Le milieu de culture solide est préparé en ajoutant 0,6 % d'agarose et 5 mM de bicarbonate de sodium au milieu liquide complet décrit ci-dessus. Les conditions de culture, température et éclairement sont les mêmes que pour le milieu liquide. * Récolte et préparation La matière première, constituée principalement de Plectonema Sp. est récoltée au griffon de la source Boussange de Vichy. Cette algue doit être propre de tous débris et d'une coloration vert émeraude franche. L'algue est aussitôt congelée à -18-C si elle doit être stockée ou transportée. L'algue est ensuite lyophilisée ou traitée aussitôt après décongélation. * Composition chimique de l'algue - Composants banaux Glucides Les glucides contenus dans l'algue sont sous forme libre et sous forme condensée. On trouve principalement du mannose et du glucose. . Lipides Les lipides totaux représentent de 2 à 12 % du poids sec de l'algue. On note la présence d'alcool triterpénique et de vitamine A. Les acides gras principaux participant à la composition de l'algue sont les suivants Acide palmitique environ 50 % des acides gras totaux Acide oléique environ 15 % des acides gras totaux C18:loe7 environ 10 % des acides gras totaux Cl8:2oe6 environ 4 % des acides gras totaux Acide stéarique environ 3 % des acides gras totaux Cl6:lû)7 environ 1 % des acides gras totaux. . Protides Les protides occupent une place très importante dans la composition chimique de l'algue (de 20 à 70 % du poids sec). . Acides aminés Les acides aminés libres représentent de 1 à 7 % du poids sec de l'algue. On trouve essentiellement : alanine, phénylalanine, acide glutamique, valine. . Pigments Pigments de structures porphiniques : chlorophylles, chlorophyllides, phaéophytines, phaéophorbides. Pigments de type caroténoidiques : ss-carotène, zéaxanthine, autres caroténoides non identifiés. Phycocyanine : pigment bleu instable de nature protéique et caractéristique des cyanophycées. Ainsi que cela ressort de ce qui précède, l'invention ne se limite nullement à ceux de ses modes de mise en oeuvre, de réalisation et d'application qui viennent d'être décrits de façon plus explicite ; elle en embrasse au contraire toutes les variantes qui peuvent venir à l'esprit du technicien en la matière, sans s'écarter du cadre, ni de la portée de la présente invention. REVENDICATIONS 1') Famille de substances à noyau porphinique de formules générales Ia et Ib suivantes dans lesquelles . R1 est un groupe méthyle ou un groupe CHO, . R2, R31 R5 et R6 sont des groupes alkyles inférieurs en C1-21 . R4 représente un atome d'hydrogène ou un groupe phytyle, et dans la formule Ib, X représente Mg, Cu, Ni, Fe, Zn, Mn ou Co, en tant que produits actifs sur la peau, à la fois en cosmétologie et en dermatologie. 2 ) Famille de substance selon la revendication 1, caractérisée en ce qu'elle comprend - les chlorophylles de formule lb, dans lesquelles R1 représente un groupe CH3 (chlorophylle a) ou un groupe CHO (chlorophylle b), X représente un atome de Mg, R2 représente un groupe CH2CH3, R3, R5 et R6 sont identiques et représentent un groupe CH3 et R4 représente un groupe phytyle, - les chlorophyllides de formule Ib, dans lesquelles R1, R2, R3, R5, R6 et X ont la même significa tion que pour les chlorophylles et R4 représente un atome d'hydrogène, - les chlorophyllines de formule Ib, dans lesquelles R1 à R6 ont la même signification que pour les chlorophylles et X représente l'un des métaux suivants Cu, Ni, Fe, Zn, Mn, Co, - les phaéophytines de formule Ia, dans lesquelles R1 à R6 ont la même signification que pour les chlorophylles, et - les phaéophorbides de formule Ia, dans lesquelles R1 à R6 ont la même signification que pour les chlorophyllides. 3 ) Famille de substances selon la revendication 1 ou la revendication 2, caractérisée en ce que l'en- semble de ces substances, sont susceptibles d'être isolées à partir d'une plante chlorophyllienne. 4 ) Famille de substances selon la revendication 3, caractérisée en ce que l'ensemble de ces substances sont susceptibles d'être isolées à partir d'une cyanophy cée. 5 ) Famille de substances selon la revendication 4, caractérisée en ce que l'ensemble de ces substances sont susceptibles d'être isolées à partir d'une Plectonema. 6 ) Famille de substances selon la revendication 5, caractérisée en ce que ladite souche de Plectonema a été déposée auprès de la Collection Nationale de Culture de Microorganismes de 1'INSTITUT PASTEUR, en date du 29 mai 1991 sous le n I-1101. 7 ) Procédé d'obtention de l'ensemble de ces substances à noyau porphinique de formule Ia et Ib selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes (1) au moins une macération à froid des parties de plantes chlorophylliennes et notamment de cyanophycées lyophilisées dans un solvant anhydre, pour l'obtention d'un extrait contenant à la fois les chlorophylles, les chlorophyllides, les phaéophorbides et les phaéophytines, et (2) séparation chromatographique de ces différentes substances en présence d'un solvant de polarité croissante. 8 ) Procédé selon la revendication 7, caractérisé en ce que le solvant anhydre est choisi parmi le chloroforme, le chlorure de méthylène, l'éthanol absolu et le méthanol absolu et le solvant à polarité croissante est choisi parmi l'acétone, le méthanol et l'éthanol plus ou moins aqueux. 9 ) Procédé selon la revendication 7 ou la revendication 8, caractérisé en ce qu'il comprend, préalablement à l'étape (1), un prétraitement de la plante chlorophyllienne, comprenant au moins une macération desdites plantes fraîches ou préalablement lyophilisées, dans un solvant très peu polaire, puis le séchage desdites plantes prétraitées. 10-) Procédé selon la revendication 9, caractérisé en ce que le solvant peu polaire est choisi parmi l'éther de pétrole, le cyclohexane, l'hexane et le tétrachlorure de carbone. 11-) Procédé de séparation spécifique des chlorophyllides de formule Ib selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il comprend (1) au moins une macération de 24 h à une semaine des parties vertes de plantes chlorophylliennes et notamment de cyanophycées lyophilisées dans un solvant aqueux constitué de 20 à 60 % d'eau et d'un solvant miscible à l'eau choisi dans le groupe constitué par l'acétone, l'alcool éthylique et le méthanol, (2) séchage des plantes ainsi traitées, (3) au moins une macération à froid des plantes obtenues en (2) dans un solvant anhydre, pour l'obtention d'un extrait contenant essentiellement des chlorophyllides et (4) séparation chromatographique des chlorophyllides. 12-) Procédé de séparation spécifique des phaéophorbides de formule Ia selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il comprend (1) une macération pendant 24 heures à une semaine à température ambiante d'un extrait de chlorophyllide, telle qu'obtenu ci-dessus, dans un solvant organique auquel on a ajouté un acide miscible (acide formique, acide acétique ou autre acide à une concentration correspondant à un pH compris entre 2 et 4, en référence à une solution aqueuse) et (2) séparation chromatographique des phaéophorbides. 13-) Procédé de séparation spécifique des phaéophorbides de formule Ia selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il comprend (1) au moins une macération à température ambiante de 24 h à 48 h des parties vertes de plantes chlorophylliennes et notamment de cyanophycées lyophilisées dans un solvant miscible à l'eau tel que l'acétone, auquel on a ajouté un acide miscible (acide formique, acide acétique ou autre acide à une concentration correspondant à un pH compris entre 2 et 4, en référence à une solution aqueuse) (2) séchage des plantes ainsi traitées, (3) au moins une macération à froid des plantes obtenues en (2) dans un solvant anhydre, pour l'obtention d'un extrait contenant essentiellement des phaéophorbides et (4) séparation chromatographique des phaéophorbides. 14-) Procédé de séparation spécifique des phaéophytines de formule Ia, caractérisé en ce qu'il comprend (1) une macération pendant une période de 24 h à une semaine, à température ambiante d'un extrait de chlorophylle, telle qu'obtenu ci-dessus, dans un solvant organique auquel on a ajouté un acide miscible (acide formique, acide acétique..., à une concentration correspondant à un pH compris entre 2 et 4, en référence à une solution aqueuse) et (2) séparation chromatographique des phaéophytines. 15') Procédé selon l'une quelconque des revendications 11 à 14, caractérisé en ce qu'il comprend, préalablement à l'étape (1), un prétraitement de la plante chlorophyllienne, comprenant au moins une macération desdites plantes fraîches ou préalablement lyophilisées, dans un solvant très peu polaire, puis le séchage desdites plantes prétraitées. 16') Souche de Plectonema, caractérisée en ce qu'elle comprend l'ensemble des substances actives sur la peau selon l'une quelconque des revendications 1 à 5. 17') Utilisation d'une substance selon l'une quelconque des revendications 1 à 6 pour l'obtention d'un médicament destiné à l'utilisation dermatologique. 18') Application à titre de produit cosmétique d'une substance selon l'une quelconque des revendications 1 à 6. 19 ) Méthode de traitement esthétique de l'Homme dans la protection de la peau et la lutte contre le vieillissement naturel de la peau, comprenant l'administration d'au moins une substance selon l'une quelconque des revendications 1 à 6, éventuellement associée à au moins un véhicule acceptable. 20') Méthode selon la revendication 19, caractérisée en ce que lesdites substances de formules Ia et Ib sont sous la forme d'une composition comprenant 0,1 à 3 % en poids desdites substances.