Brevet FR2692270A1 — publié le 19931217

La présente invention est relative à des peptides et à leurs fragments, spécifiques du virus de limmunodéficience féline (VIF) ainsi qu'à l'utilisation desdits fragments comme réactif de diagnostic et comme agent induisant une réponse immune (cellulaire et/ou production d'anticorps), notamment pour la prévention de l'immunodéficience féline. L'immunodéficience féline est due à un lentivirus, le virus de l'immunodéficience féline (VIF), qui présente une structure génétique similaire à celle des lentivirus des primates (VIH et VIS). L'immunodéficience féline pose un problème important de santé vétérinaire, dans la mesure où un nombre important de chats infectés par le VIF a été décelé aux Etats-Unis, au Japon et en Europe (5 à 25 % des animaux). A l'heure actuelle, l'immunodéficience féline est essentiellement diagnostiquée lors de l'apparition des signes cliniques (lymphadénopathie généralisée et survenue d'infections opportunistes), alors qu'un diagnostic très précoce aurait des avantages importants tant dans le traitement que dans la prévention de cette maladie. Plusieurs isolats viraux indépendants ont été mis en évidence à travers le monde et un certain nombre de travaux pour mettre en évidence la structure des souches isolées ont été réalisés, notamment en ce qui concerne la souche américaine Petaluma [R.L. TALBOTT et al. (Natl. Acad Sci. USA, 1989, 86, 5743-5747) T.R. PHILIPPS et al. (J. Virol., 1990, 64, 10, 46054613)], les souches japonaises (souches TM1 et TM2) [T. MIYAZAWA et al. (Arch. Virol., 1989, 108, 59-68)] ou les isolats suisses (FIVZ1 et FIVZ2) [S. MORIKAWA et al., (Virus Research, 1991, 21, 53-63)]. Les séquences nucléotidiques de trois clones proviraux, dérivés des isolats de VIF américains (souche Petaluma) ont été décrites (clones FIV34TF10, FIV14 et isolat PPR) [R.A. OLMSTED et al., (Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1989, 86, 2448-2452) ; T.R. PHILIPPS et al., 1990 R.L. TALBOTT et al., (Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1989, 86, 5743-5747) et comparées aux deux isolats suisses (S. MORIKAWA et au.). Cette comparaison a conduit S. MORIKAWA et al. à préciser la présence de certaines régions conservées et de certaines régions variables dans le gène env du VIF. Des souches françaises ont également été isolées (souches WO et ME) [A. MORAILLON et al., 1992, Vet. Mic., 31, 41-45] Les protéines d'enveloppe du VIF sont considérées comme étant au centre de la relation hôte-virus leur étude est donc essentielle pour comprendre l'interaction du virus avec le système immunitaire (épitopes de neutralisations, épitopes B et T) et avec les cellules-cibles de l'infection, et mettre au point aussi bien des réactifs de diagnostic performants que des vaccins efficaces, constitués de protéines virales à action immunogène et protectrice, vis-à-vis de I'ensemble des souches de VIF. La protéine env du VIF peut fournir, après clivage, deux fragments glycoprotéiques, dénommés SU (glycoprotéine de surface) et TM (glycoprotéine transmembranaire). Il a été montré que des fragments peptidiques issus d'une protéine env du VIF contiennent des déterminants majeurs de la protection (Demande PCT/FR91/00917 au nom de la Demanderesse). Poursuivant ses travaux, la Demanderesse a trouvé qu'il était nécessaire, pour optimiser aussi bien le diagnostic que la prévention (vaccins sous-unités), de sélectionner des peptides viraux de petites tailles, particulièrement adaptés au diagnostic et à la prévention et permettant de former un pool de réactifs pour la détec tion de groupe (ensemble des souches de VIF) et/ou la détection de type (détection sélective de certaines souches). La présente invention s'est en conséquence donné pour but de pourvoir à une composition à pouvoir immunogène et/ou protecteur, spécifique du virus de l'immunodéficience féline, obtenue en exprimant des fragments sélectionnés pour leur capacité neutralisante et/ou la présence d'épitopes de reconnaissance de groupe et/ou de type ; l'obtention par génie génétique ou synthèse chimique de tels peptides spécifiques, a pour avantage de résoudre le problème de production de virus et d'obtenir directement les peptides désirés. La présente invention a pour objet un peptide et/ou un fragment de peptide, caractérisé en ce qu'il est codé par une séquence nucléotidique ou une combinaison de plusieurs segments nucléotidiques choisis dans le groupe qui comprend les séquences env et les séquences gag issues de n'importe quelle souche de VIF, en ce qu'il est reconnu par les anticorps dirigés contre au moins une souche différente de celle dont provient ledit peptide et/ou par les anticorps produits par des chats infectés naturellement et en ce qu'il présente une capacité d'induction d'une réponse immune cellulaire et/ou de production d'anticorps protecteurs vis-à-vis d'au moins une souche de VIF, chez des chats non infectés. Selon un mode de réalisation avantageux desdits peptides, ils sont exprimés par des séquences nucléotidiques issues de la souche WO du VIF. Selon une disposition avantageuse de ce mode de réalisation, ledit peptide comprend 854 aminoacides, présente un poids moléculaire apparent d'environ 90 kDa et correspond à la protéine env du VIF WO. Un tel peptide comprend entre 10 et 25 sites de glycosylation. Selon une modalité avantageuse de cette dispo sition, ledit peptide présente une séquence en acides aminés qui répond à la formule I ci-après Met-Ala-Glu-Gly-Phe-Ala-Ala-Asn-Arg-Gln-Trp-Ile-Gly-Phe- Glu-Glu-Ala-Glu-Glu-Leu-Leu-Asp-Phe-Asp - Ile-Al a-Ile-Gln- Met-Asn-Glu-Glu-Gly-Pro-Leu-Asn-Pro-Gly-Val-Asn-Pro-Phe- Arg-Val-Pro-Gly-Ile-Thr-Glu-Ala-Glu-Lys-Gln-Glu-r-Cys* - Asn-Ile-Leu59-Gln-Pro-Lys-Leu-Gln-Asp-Leu-Lys-Gly-Lys Ile-Gln-Glu-Val-Lys-Leu-Glu-Glu-Gly-Asn-Ala-Gly-Lys-Phe Arg-Arg-Ala-Arg-Phe-Leu-Arg-Tyr-Ser-Asp-Glu-Thr-Val-Leu- Ser-Leu-Ile-His 101-Leu-Phe-Ile-Gly-Tyr-Cys-Pro-His109 Leu-Cys-Arg-Arg-His 114-Glu-Leu-Gly-Ser-Leu119 -Arg-His121- Asp-Ile-Asp-Ile-Glu-Ala-Leu-Gln-Glu-Glu-Arg-Tyr-Asn-Asp Arg-Glu-Lys-Gly-Ile-Thr-Asp-Asn-Ile-Lys-Tyr-Gly-Lys-Arg Cys * -Leu-Ile-Gly-Thr-Ala-Val-Leu-Tyr-Leu-Leu-Leu-Ser-Leu Gly-Ile-Ile-Ile-His168-Thr-Cys-Lys-Ala-Gln-Val-Val-Trp Arg177-Leu-Pro-Pro-Leu-Val-Val-Pro-Val-Glu-Glu-Ser-Glu Ile-Ile-Phe-Trp-Asp-Cys -Trp-Ala-Pro-Glu-Glu-Pro-Ala Cys * -Gln-Asp-Phe-Leu-Gly-Ala-Met-Ile-His-Leu-Lys-Ala-Ser- Thr-Asn-Ile-Ser-Ile-Gln-Glu-Gly-Pro-Thr-Leu-Gly-Asn-Trp Ala-Arg-Glu-Ile-Trp-Gly-Thr237-Leu-Phe-Lys-Lys-Ala-Thr Arg-Gln-Cys*-Arg-Arg-Gly-Arg-Ile-Trp-Arg-Arg-Trp-Asn-Glu Thr-Ile-Thr-Gly-Pro-Leu-Gly-Cys * -Ala-Asn-Asn-Thr-Cys * Tyr-Asn-Ile-Ser-Val-Ile-Val-Pro-Asp-Tyr-Gln-Cys* -Tyr-Leu Asp-Arg-Val-Asp-Thr-Trp-Leu-Gln-Gly-Lys-Val-Asn-Ile297 Ser-Leu-Cys -Leu-Thr-Gly-Gly-Lys-Met-Leu-Tyr-Asn-Lys-Glu Thr-Lys-Gln-Leu-Ser-Tyr-Cys*-Thr-Asp-Pro-Leu-Gln-Ile-Pro- Leu-Ile-Asn-Tyr-Phe-Gly-Pro-Asn-Gln-Thr-Cys -Met-Trp-Asn- Thr-Ser-Gln-Ile-Gln-Asp-Pro-Glu-Ile-Pro-Lys-Cys -Gly-Gly Asn-G1n357 -Asn-Ala-Tyr-Tyr-Asn-Ser-Cys -Arg-Trp -Glu-Hi s - Thr-Asp-Val-Gln-Phe-Gln-Cys -Gln-Arg-Thr-Gln-Ser-Gln-Pro Gly-Ser-Trp-Ile-Arg-Ala-Ile-Ser-Ser-Trp-Lys-Gln-Arg-Asn Arg-Trp-Glu-Trp-Arg-Pro-Asp-Phe-Glu-Ser-Glu-Lys-Val-Lys Val-Ser-Leu-Gln-Cys*-Asn-Ser417 -Thr-Lys -Asn-Leu-Thr-Phe- Ala-Met-Arg-Ser-Ser-Gly-Asp-Tyr-Gly-Glu-Val-Thr-Gly-Ala- Trp-Ile-Glu-Phe-Gly-Cys * -His-Arg-Thr-Lys-Ser-Lys-Tyr-His Thr-Glu-Ala-Arg-Phe-Arg-Ile-Arg-Cys * -Arg-Trp-Asn-Val-Gly Asp-Asn-Thr-Ser-Leu-Ile-Asp-Thr-Cys * -Gly-Glu-Thr477-Gln Asn-Val-Ser-Arg-Ala-Asn-Pro-Val-Asp-Cys -Thr-Met-Tyr-Ala- Asn-Arg-Met-Tyr-Asn-Cys -Ser-Leu-Gln-Asn-Gly-Phe-Thr-Met Lys-Val-Asp-Asp-Leu-Ile-Met-His-Phe-Asn-Lys-Thr-Lys -Ala Val-Glu-Met -Tyr-Asn-Ile-Ala-Gly-Asn-Trp-Ser-Cys * -Lys -Ser- Asp-Leu-Pro537-Pro-Thr-Trp-Gly-Tyr-Met-Asn-Cys -Asn-Cys - Thr-Asn-Ser-Thr-Asn-Ser-Gly-Thr-Gly-Ile-Arg-Met-Ala-Cys Pro-Arg-Asn-Gln-Gly-Ile-Leu-Arg-Asn-Trp-Tvr-Asn-Pro-Val- Ala-Gly-Leu-Arg-Gln-Ser-Leu-Glu-Lys -Tyr-Gîn-Val -Val -Lys - Gln-Pro-Asp-Tyr-Leu-Val595-Val-Pro-Gly-Glu-Val-Met-Glu Tyr-Lys-Pro-Arg-Arg-Lys-Arg-Ala-Ala-Ile-His-Val-Met-Leu- Ala-Leu-Ala-Thr-Val-Leu-Ser-Met-Ala-Gly-Ala-Gly-Thr-Gly- Ala-Thr-Ala-Ile-Gly-Met-Val-Thr-Gln-Tyr-Gln-Gln-Val-Leu Ala-Thr-His-Gln-Glu-Ala-Ile-Glu-Lys-Val-Thr655-Glu-Ala- Leu-Lys-Ile-Asn-Asn-Leu-Arg-Leu-Val-Thr-Leu-Glu-His -Gîn- Val-Leu-Val-Ile-Gly-Leu-Lys-Val-Glu-Ala-Met-Glu-Lys -Phe Leu-Tyr-Thr-Ala-Phe-Ala-Met-Gln-Glu-Leu-Gly-Cys -Asn-Gln Asn-Gln-Phe-Phe-Cys -Lys-Val-Pro-Ser-Ala-Lys-Trp-Glu-Arg Tyr-Asn715 -Met-Thr-Ile-Asn-Gln-Thr-Ile-Trp-Asn-His -Gly- Asn-Ile-Thr-heu-Gly-Glu-Trp-Tyr-Asn-Gln-Thr-Lys-Asp-Leu- Gln-Gln-Arg-Phe-Tyr-Glu-Ile-Ile-Met-Asp-Ile-Glu-Gln-Asn Asn-Val-Gln-Gly-Lys-Lys-Gly-Leu-Gln-Gln-Leu-Gln-Glu-Trp Glu-Asp-Trp-Val-Gly-Trp-Ile775-Gly-Asn-Ile-Pro-Gln-Tyr Leu-Lys-Gly-Leu-Leu-Gly-Gly-Ile-Leu-Gly-Ile-Gly-Leu-Gly- Met -Leu-Leu-Leu-Ile-Leu-Cys* -Leu-Pro-Thr-Leu-Val-Asp Cys * -Ile-Arg-Asn-Cys * -Ile-His -Lys -Ile-Leu-Gly-Tyr-Thr- Val-Ile-Ala-Met-Pro-Glu-Val-Glu-Glu-Glu-Glu-Ile-Gln Pro83 5-Gln-Met-Glu-Leu-Arg-Arg-Asn-Gly-Arg-Gln-Cys * -Gly- Met-Ser-Glu-Lys-Glu-Glu-Glu854 (I) Selon une autre disposition avantageuse de ce mode de réalisation, ledit peptide comprend 450 aminoacides, présente un poids moléculaire apparent d'environ 50 kDa et correspond à la protéine gag du VIF WO. Selon une modalité avantageuse de cette disposition, ledit peptide présente une séquence en amino acides qui répond à la formule II ci-après Met gly asn gly gln gly arg asp trp lys met ala ile lys arg cys ser asn gly ala val gly val gly gly lys ser lys lys phe gly glu gly asn phe arg trp ala ile arg met ala asn val ser thr gly arg glu pro gly asp ile pro glu thr leu asp gln leu arg leu val ile cys asp leu gln glu arg arg glu lys phe gly ser ser lys glu ile asp met ala ile ala ala leu lys val phe ala val val gly leu leu asn met thr val ser thr ala ala ala ala glu asn met tyr thr gln met gly leu asp thr arg pro ser thr lys glu ala gly gly lys glu glu gly pro pro gln ala tyr pro ile gln thr val asn gly thr thr gln tyr val ala leu asp pro lys met val ser ile phe met glu lys ala arg glu gly leu gly gly glu glu val gln leu trp phe thr ala phe ser ala asn leu thr pro thr asp met ala thr leu ile met ala arg pro gly cys leu thr gln glu gln gln ala glu ala arg phe ala pro ala arg met gln cys arg ala trp tyr leu glu ala leu gly lys leu ala ala ile lys ala lys ser pro arg ala val gln leu arg gln gly ala lys glu asp tyr ser ser phe ile asp arg leu phe ala gln ile asp gln glu gln asn thr ala glu val lys leu tyr leu lys gln ser leu ser ile ala asn ala asn ala asp cys lys lys ala met ser his leu lys pro glu ser thr leu glu glu lys leu arg ala cys gln glu ile gly phe pro gly tyr lys met gln leu leu ala glu ala leu thr lys val gln val val gln ser lys gly pro gly pro val cys phe asn cys lys arg pro gly his leu ala arg gln cys arg asp val lys lys cys asn lys cys gly lys pro gly his leu ala ala lys cys trp gln gly gly lys lys asn ser gly asn trp lys ala gly arg ala ala ala pro val asn gln val gln gln ala val met pro ser ala pro pro met glu glu lys leu leu asp leu (Il) La présente invention a également pour objet des fragments ou des combinaisons de fragments incluant des segments du peptide conforme à l'invention, comprenant entre 5 et 80 aminoacides et au moins un épitope. On entend par épitope, au sens de la présente invention, aussi bien les épitopes communs à toutes les souches de VIF (zones conservées), reconnus par tous les anticorps anti-env (reconnaissance de groupe), que les épitopes propres à certaines souches de VIF (zones variables), reconnus par certains anticorps seulement (reconnaissance de type) ; de plus, tous ces fragments induisent une production d'anticorps et/ou une réponse cellulaire. Ces fragments ont l'avantage de présenter une sélectivité et/ou une spécificité importante vis-à-vis du VIF, tout en étant de petite taille (prix de revient nettement diminué). Parmi ces fragments, l'invention englobe, entre autres, des fragments incluant des segments de peptides conformes à l'invention, correspondant à des épitopes + conservés, tels que - un fragment incluant un segment de 37 aminoacides, dénommé SU1, qui correspond aux positions 253-289 de la séquence de formule I (souche WO) - un fragment incluant un segment de 37 aminoacides, dénommé SU2, qui correspond aux positions 388-424 de la séquence de formule I, lequel segment contient au moins un épitope incluant la séquence Trp398-Glu-Trp-Arg-Pro-Asp-Phe-Glu-Ser-Glu-Lys408 (peptide dénommé P240) - un fragment incluant un segment de 26 aminoacides, dénommé SU3, qui correspond aux positions 467-492 de la séquence de formule I - un fragment incluant un segment de 21 aminoacides, dénommé SU4, qui correspond aux positions 508-528 de la séquence de formule I - un fragment incluant un segment de 35 aminoacides, dénommé SU5, qui correspond aux positions 572-606 de la séquence de formule I - un fragment incluant un segment de 51 aminoacides, dénommé TM1, qui correspond aux positions 595-647 de la séquence de formule I - un fragment incluant un segment de 31 aminoacides, dénommé TM2, qui correspond aux positions 681-711 de la séquence de formule I, lequel segment contient un épitope incluant la séquence :Gln699-Asn Gln-Phe-Phe-Cys-Lys705 ou la séquence Cys697-Asn-Gln-Asn Gln-Phe-Phe-Cys-Lys705 (peptide dénommé P237) - un fragment incluant un segment de 45 aminoacides, dénommé TM3, qui correspond aux positions 744-788 de la séquence de formule I, lequel segment contient un épitope incluant la séquence : Gln764-Leu- Gln-Glu-Trp-Glu-Asp-Trp-Val-Gly-Trp-Ile-Gly-Asn-Ile778 ou la séquence Gln763-Gln-Leu-Gln-Glu-Trp-Glu-Asp770 (peptide dénommé P241) ou la séquence Val772-Gly-Trp-Ile-Gly Asn-Ile-Pro779 (peptide dénommé P242) - un fragment incluant un segment de 29 aminoacides, dénommé TM4, qui correspond aux positions 826-854 de la séquence de formule I. Lesdits peptides peuvent avantageusement être obtenus soit par clonage, soit par synthèse, notamment par synthèse de Merrifield. - D'un point de vue diagnostic Parmi les peptides SU et TM, l'invention permet de sélectionner des fragments universels (notamment ceux inclus dans SU2, TM2 et TM3), reconnaissant les anticorps produits par un VIF, s'il est présent, quelle que soit la souche et des fragments spécifiques de souche WO (notamment SU3 et TM4). - D'un point de vue protecteur (vaccin en particulier) les fragments SU et les fragments TM induisent plus spécifiquement la production d'anticorps, et éventuellement une réponse cellulaire ; en conséquence le pool de peptides conforme à l'invention assure soit une protection spécifique vis-à-vis de la souche d'origine, soit une protection plus large (plusieurs souches de VIF). De plus, la sélection d'un tel ensemble de fragments permet de choisir le vaccin le plus proche possible de la souche infectante en cas d'immunothérapie active ou passive, ou de déterminer les souches présentes dans une région donnée, pour le choix d'un vaccin préventif, le plus approprié. Au sens de la présente invention, le terme fragment peptidique comprend tous les fragments incluant un segment de peptide conforme à l'invention ainsi que les segments de peptides homologues ; on entend par peptides homologues, les peptides qui ne perdent pas les propriétés de reconnaissance des anticorps dirigés contre le peptide de référence (notamment les peptides TM2, TM3 et SU2). On entend également par peptide homologue, un peptide présentant une position et une fonction équivalentes au sein du VIF. La présente invention a également pour objet une composition à pouvoir immunogène et/ou protecteur, caractérisée en ce qu'elle comprend au moins un peptide conforme à l'invention, éventuellement associé à au moins une autre substance immunogène ou immunostimulante et/ou un véhicule pharmaceutiquement acceptable. La présente invention, a, de plus, pour objet un procédé de détection d'anticorps anti-VIF, caractérisé en ce qu'il consiste à détecter les anticorps anti-VIF éventuellement présents dans un échantillon biologique à l'aide d'un peptide ou fragment de peptide conforme à l'invention, éventuellement fixé sur un support solide approprié, en mettant en présence ledit échantillon biologique avec ledit/lesdits peptides ou fragment(s) de peptides, auxquels se lient les anticorps anti-VIF si de tels anticorps sont présents dans l'échantillon à analyser, la lecture du résultat étant révélée par un moyen approprié, notamment EIA, RIA, fluorescence. Ce procédé permet notamment de vérifier la séroconversion des animaux vaccinés ou de procéder à des enquêtes sérologiques à visée épidémiologique. Selon le choix du peptide, ledit procédé permet de déterminer une infection à VIF, quelle que soit la souche (réactif universel tel que précisé ci-dessus), ou bien permet de spécifier la souche infectante afin de mieux déterminer le vaccin à mettre en oeuvre. La présente invention a, en outre, pour objet un kit, prêt à l'emploi, pour la mise en oeuvre du procédé de détection d'anticorps anti-VIF, caractérisé en ce qu'il comprend, outre des quantités utiles de tampons appropriés pour la mise en oeuvre de ladite détection, des doses appropriées d'au moins un peptide et/ou un fragment peptidique conforme à l'invention. Outre les dispositions qui précèdent, l'invention comprend encore d'autres dispositions, qui ressortiront de la description qui va suivre, qui se réfère à des exemples de mise en oeuvre du procédé objet de la présente invention. Il doit être bien entendu, toutefois, que ces exemples sont donnés uniquement à titre d'illustration de l'objet de l'invention, dont ils ne constituent en aucune manière une limitation. EXEMPLE 1 : Peptides conformes à l'invention. a) Construction d'une banaue d'exoression des peptides conformes à l'invention Le clonage du gène env du VIF WO dans un vecteur Bluescripte KS+ fournissant la construction pKSe ou dans un vecteur Bluescript SK+ fournissant la construction pKSel ont été décrits dans la Demande de Brevet n 92 07257 déposée 16 juin 1992. Des fragments chevauchants du plasmide pKSe sont générés par digestion à la DNase I en présence d'ions manganèse. Les fragments d'ADN obtenus, après un temps optimal d'incubation avec la DNase (temps donnant des fragments de longueur d'environ 200 pb) sont traités avec le fragment de Klenow de la DNa polymérase d'E. coli, de manière à obtenir des extrémités à bouts francs, pour une ligature efficace avec la séquence de liaison. Le marquage au phosphore 32 des fragments d'ADN permet le contrôle des étapes ultérieures. Des séquences de liaison de 10 paires de base (pb), ayant un site EcoRI (Pharmacia), sont utilisées pour la ligature avec les fragments pKSe obtenus. Les produits de la ligature sont alors digérés avec l'enzyme de restriction EcoRI et séparés par électrophorèse dans des gels d'agarose LMP NUSieve 2 %, de manière à sélectionner un ensemble de fragments comprenant entre 100 et 200 pb et à éliminer les séquences de liaison libres. Les fragments sélectionnés sont extraits au phénol à partir de l'agarose et ligaturés avec un vecteur kgtll digéré à l'enzyme de restriction EcoRI (Promega). Les produits de la ligature sont encapsidés en utilisant un kit Packagene (Promega) et étalés sur une souche d'E. coli Y1090. Les phages recombinants sont sélectionnés par détection d'une couleur en présence de 25 Fl d'IPTG 1 M et de 25 Rl de Xgal 80 mg/ml. L'étalement de la banque kgtll fournit 105 clones indépendants. L'ADN de phage, obtenu à partir des plaques non colorées, est analysé par PCR en utilisant des amorces kgtll 1218 et 1222, complémentaires du fragment 5-galactosidase de la matrice de kgtll : 8 des 10 clones contiennent des inserts de dimension moyenne d'environ 160 pb. La banque est alors amplifiée pour obtenir un titre de 3 x 109 par ml. Une hybridation in situ de 37 phages avec des sondes d'ADN marquées au phosphore 32, représentant une amplification PCR des 3 régions E1, E2 et E3 du gène env WO (fragments 1-977 ; 978-2016 ; 2017-2562), indiquent que la banque est représentative du gène env entier. b) Criblage de la banaue - La banque env kgtll est criblée en utilisant des sérums de deux chats expérimentalement infectés avec l'isolat VIF WO. La banque est étalée à une concentration approximative de 3x104 pfu sur E. coli Y1090 et les plaques sont incubées à 42-C pendant 3 à 4 heures. Les plaques sont alors recouvertes de filtres de nitrocellulose saturés d'IPTG 10 mM et incubés pendant 3 heures à 37 C. Les filtres sont traités pour un criblage immunologique avec des sérums félins, dénommés CTF 1915 et CTF 1916, dilués au 300ème en utilisant des méthodes standards [procédure au lait dégraissé (MANIATIS)]. Des IgG de chèvre anti-chat (H+L) couplées à la peroxydase (KPL) et diluées au 1000ème, sont utilisées comme deuxième anticorps.Une réaction positive est révélée par du 4chloro-l-naphtol (Merck) (bruit de fond peu important). Des fragments d'agar, contenant les particules de phages obtenues à partir de régions correspondant à des signaux positifs sur le filtre, sont prélevés et incubés avec un 1 ml de SM qui comprend NaCl 2,9 g MgSO4 2 g Tris 1M pH 7,5 2,5 ml Gélatine 2 % 2,5 ml H2O 500 ml Les phages sélectionnés sont réensemencés pour un deuxième criblage. Les plaques de phages positives sont prélevées et incubées avec 1 ml de SM. La réactivité des phages sélectionnés est finalement confirmée par une troisième procédure de criblage. Les lysats de phages X obtenus à partir de phages positifs sont préparés par une méthode d'étalement standard (protocole Promega) et stockés à 4"C en présence de chloroforme 0,3 %.L'analyse subséquente des inserts env est réalisée soit par séquen çage direct des amplifications PCR ou par hybridation in situ en utilisant des sondes marquées au phosphore 32, comme précisé à l'exemple 1. - Le criblage immunologique proprement dit de la banque est réalisé avec les deux sérums cités cidessus. 170 plaques positives sont détectées au premier criblage, 108 de ces plaques sont isolées après le troisième criblage ; 60 clones sur les 108 sont séquencés et les autres sont analysés par une hybridation in situ avec des sondes radioactives correspondant aux régions immunogéniques majeures déjà séquencées, comme spécifié cidessus. Pour l'hybridation in situ, l'ADN de bactériophage est transféré sur un filtre de nitrocellulose et hybridé avec des sondes marquées au phosphore 32 à 58*C, pendant une nuit, après le blocage des liaisons non spécifiques avec une solution de Denhardt. Comme sondes, on utilise des produits de l'amplification des clones de VIF 1, 2, 9, 35, 44, 90, 133, 147 et 170 marqués avec du dATP [32]p, en utilisant la méthode de translation de coupure. En utilisant cette double stratégie, 85 inserts ont été sélectionnés comme correspondant à 6 régions immunologiques de l'enveloppe comme visible dans les Tableaux I et II ci-après, dans lesquels le Tableau I présente les séquences des peptides antigéniques exprimés par les clones de bactériophages recombinants et le Tableau II précise la distribution des clones positifs, dans les régions immunogènes. TABLEAU I Protéine Numéro de Réacti- Séquence(a) Séquence(b) virale clone vité nucléotidique peptidique gp100 SUI 96 +(c) 727-873 244-291 (1ère 147 ++ 735-890 246-296 région) (d) 14 ++ 747-872 250-290 97 + 750-870 251-289 54 ++ 755-872 253-290 gp120 SU2 93 ++ 1093-1274 365-424 (2ème 69 ++ 1113-1274 372-424 région) FIV1 ++ 1122-1274 375-424 12 ++ 1142-1273 382-424 133 ++ 1160-1274 387-424 75 ++ 1163-1274 388-424 gp120 SU3 73 ++ 1377-1536 460-512 (3ème 148 + 1386-1506 463-502 région) 154 ++ 1387-1538 463-512 170 +/++ 1398-1478 467-492 48 + 1452-1585 485-528 SU4 131 + 1452-1599 485-533 136 + 1458-1598 487-532 64 + 1460-1597 488-532 44 +/++ 1492-1597 498-532 100 +/- 1502-1637 502-545 158 + 1506-1637 503-545 130 + 1521-1701 508-567 gp120 SU5 23 + 1654-1820 552-606 (4ème 103 + 1657-1820 553-606 région) 35 ++ 1683-1823 562-607 91 ++ 1700-1822 568-607 51 ++ 1714-1822 572-607 gp120 SU/ 42 ++ 1719-1872 574-623 41 TM1 124 + 1782-1944 595-647 (4ème 20 +/- 1789-1939 597-646 région) Protéine Numéro d Réacti- Séquence(a) Séquence(b) virale clone vité nucléotidiqu peptidique gp41 TM2 88 + 1961-2134 654-711 (5ème 53 + 1299-2153 667-717 région) 163 + 2002-2215 668-738 84 + 2011-2176 671-725 157 ++ 2019-2176 674-725 FIV2 ++ 2019-2179 674-726 87 + 2020-2167 674-722 160 + 2020-2140 674-713 108 ++ 2039-2209 681-736 63 ++ 2092-2285 698-761 11 ++ 2097-2282 700-760 68 ++ 2118-2272 707-757 33 ++ 2175-2365 726-788 9 ++ 2226-2366 743-788 TM3 158 ++ 2230-2369 744-789 gp41 TM4 27 ++ 2427-2562 810-854 (6ème 90 + 2475-2562 826-854 région) (a) séquences inserts déterminées à partir des clones d'ADN.La numération des nucléotides commence à partir du codon d'initiation ATG. (b) les positions des aminoacides sont numérotées à partir de la méthionine N-terminale. (c) l'intensité des réactions immunologiques est évaluée de faible (+/-) à forte (++). (d) les régions immunogènes de l'enveloppe déterminées à l'aide des séquences chevauchantes des clones réactifs. I1 faut noter que la protéine SU (glycoprotéine d'enveloppe externe de surface) présente un poids moléculaire de 100 à 120 et que la protéine TM (glycoprotéine virale d'enveloppe transmembranaire) présente un poids moléculaire compris entre 35 et 45. Le Tableau I et la figure 1 précisent les séquences nucléotidiques des différents inserts ainsi que les séquences peptidiques correspondantes. Les séquences chevauchantes mettent en valeur la présence de 8 domaines immunogènes (épitopes), dont 5 sont situées dans la glycoprotéine extramembranaire (gp) SU (SU1, aminoacides 253-289 ; SU2, aminoacides 388-424 SU3, aminoacides 467-492 ; SU4, aminoacides 508-528 et SUS, aminoacides 572-606) et 3 dans la gp transmembranaire TM (TM2, aminoacides 681-711 ; TM3, aminoacides 744-788 et TM4, aminoacides 826-854) (figure 1).La séquence peptidique 597-646, qui est définie par les clones 20 et 124, chevauche le 5ème épitope SU (574-606) et représente, sans doute, un épitope TM ('M NH2-terminal (TM1). Cette hypothèse est confirmée par le criblage immunologique avec les sérums de chats, qui montre les différentes réactivités entre le clone 51 (épitope SU5) et le clone 124 (épitope TM1). Cette figure 1 illustre la localisation des régions épitopiques des glycoprotéines (gp) d'enveloppe du VIF, avec SU:gp100 ; TM: gp40. Dans cette figure, les sites de clivages sont représentés par des flèches verticales ; les clones principaux sont représentés par des lignes épaisses et les différents rectangles indiquent les épitopes correspondants aux séquences chevauchantes minimales (rectangle de couleur sombre#épitopes avec réactivité plus importante). Le Tableau II, ci-après, illustre le nombre de clones présentant les régions immunogéniques telles que précisées au Tableau I ci-dessus. TABLEAU II Régions immunogéniques Nombre de clones 1ère 7 2ème 11 3ème 22 4ème 10 5ème 31 6ème 4 Les phages présentant la même séquence sont comptés une fois et les phages contenant un ou plusieurs inserts ou qui hybrident avec plus d'une sonde sont éliminés. - Le criblage sérologique des épitopes identi fiés est réalisé à partir de sérums de 24 chats infectés expérimentalement avec différents isolats de VIF et à partir de 24 chats naturellement infectés (2 de ceux-ci étant également co-infectés par le virus de la leucémie féline) (Tableau III). Tous les sérums ont été considérés comme réactifs avec les protéines structurales virales lorsqu'ils sont testés en Western blot. 8 sérums de chats SPF sont utilisés comme contrôle.Les clones de bactériophages 54, 133, 154, 44, 51, 124, 157, 9 et 27, du Tableau I, contenant les inserts correspondant aux domaines épitopiques identifiés, ont été également criblés en utilisant un essai dot-phage, (figures 2A et 2B) comme suit Approximativement 100 pfu de chaque phage dans 1 1 de SM sont étalés sur une couche de E coli Y1090 et mis en culture jusqu'à ce que des plaques apparaissent. Pour le criblage immunologique, un filtre de nitrocellulose imprégné d'IPTG est placé sur la couche et on réalise les étapes comme décrit précédemment pour le criblage de la banque. Les résultats sont illustrés sur le Tableau III ci-après et sur les figures 2. A la figure 2A, chaque filtre de nitrocellulose correspond à un test sérique. Les tests sont réalisés comme précisés cidessus et la révélation de la réaction se fait avec du 4chloro-1-naphtol jusqu à ce que le bruit de fond des échantillons contrôle devienne visible (filtre k : phage non recombinant utilisé comme contrôle négatif). Les numéros de clones sont indiqués en haut de la figure (54, 51, 44, 27, 9 et X, 157, 154, 133, 124). Deux tests sont plus particulièrement représentés à cette figure (1-5 et 6-10), NC1 et NC2 étant des contrôles négatifs (chats SPF) ; 1, 7 et 10 : chats inoculés par du VIF Villefranche ; 2 et 3 : chats infectés naturellement ; 4 et 9 : chats inoculés avec du VIF ENVNIP ; 5 : chats inoculés par du VIF Petaluma ; 6 chats inoculés par un VIF ME ; 8 : chat inoculé par un VIF WO. TABLEAU III n EPITOPE Origine du SU1 SU2 SU3 SU4 SU5 TM1 TM2 TM3 TM4 sérum (C.54)+ (C.133) (C.154) (C44) (C.51) (C.124) (C.157) (C.9) (C.27) WO IV 4 3++ 4 3 4 4 2 4 4 3 ME IV 6 2 6 0 1 5 4 6 6 4 PET IV 4 0 4 0 0 0 1 4 4 0 IC 2 0 2 0 0 0 0 2 2 0 VILLEFR IV 3 0 3 0 0 0 0 3 3 0 IC 2 0 2 0 0 0 0 2 2 0 ENVNIP IV 3 2 3 0 1 1 0 3 3 0 Exp.Inf.Tot. 24 7 24 3 6 10 7 24 24 7 NAT.INF.1st 10 2 9 0 1 4 4 10 8 1 NAT.INF.2nd 12 5 12 0 1 4 1 12 9 2 FIV+FELV 2 0 2 0 1 1 1 2 1 0 Nat.Inf.Tot. 24 7 23 0 3 9 6 24 18 3 Total 48 14 47 3 9 19 13 48 42 10 Sérum normal 8 0 0 0 0 0 0 0 0 0 Le Tableau III, dans lequel PET = Petaluma Villefr = Villefranche ; NAT. INF. lst = chats naturellement infectés provenant de l'école vétérinaire de Nantes ; NAT.INF. 2nd = chats naturellement infectés provenant de l'école vétérinaire de Maisons-Alfort ; IV = inoculation intraveineuse ; IC = inoculation intracérébrale, montre la réactivité des régions épitopiques avec des sérums de chats SPF et infectés : le clone 133 (épitope SU2) est réactif avec tous les sérums de chats infectés expérimentalement et avec 23/24 sérums de chats naturellement infectés. Le clone 157 (épitope TM2) est reconnu par la totalité des sérums de chats infectés. Pour ces deux clones, l'intensité de réaction est très importante. Le clone 9 (épitope TM3) est réactif avec 100 % des sérums de chats infectés expérimentalement et avec 75 % des sérums de chats infectés naturellement ; le clone 27 (TM4) réagit avec 29 % des sérums de chats infectés expérimentalement (1 WO et 4 ME) mais seulement avec 12,5 % de chats infectés naturellement. Le clone 44 (SU4) réagit avec 25 % des sérums de chats infectés expérimentalement et avec 12,5 % des chats infectés naturellement. Les autres épitopes montrent une réactivité variable sans différence significative entre les infections naturelles et expérimentales : 29 % SU1, 39,5 % SU5 et 27 % TM1. SU3, qui est détecté par les deux sérums de chats infectés WO utilisés pour le criblage de la banque, réagit seulement avec un seul des deux autres sérums testés (des chats infectés par WO) et ne réagit du tout avec les sérums d'autre origine. Aucune réactivité n'est détectée avec les sérums normaux. - La réactivité en dot-phage des sérums de chats infectés avec les peptides exprimés par les clones sus-dits est confirmée par le Western blot (figure 2B) réalisé avec des lysats d'E. coli, contenant les antigènes recombinants exprimés par les phages lysogènes. La figure 2B illustre cette réactivité, Les sérums utilisés sont les mêmes que ceux de la figure 2A n 6 et n 8. Les numéros de clones sont indiqués en haut de la figure. De manière plus précise, les clones recombinant kgtll 54, 133, 73, 154, 44, 51, 124, 157, 9 et 27 sont exprimés en tant que lysogènes dans E. coli Y1089, comme décrit par HUYNH et al. (1985). Du lysat brut, contenant les protéines de fusion, est préparé à partir de culture lysogénique induite par IPTG en faisant des cycles congélation-décongélation et sonication du culot cellulaire, remis en suspension dans 200 A1 d'un tampon TEP (Tris-HCl 100 mM, pH 7,4, EDTA 10 mM, PMSF 1 mM). Les extraits sont portés à ébullition dans un tampon Laemmli et remis en suspension dans des gels de SDS polyacrylamide 5-10 % (40 Ag/puits) en utilisant un appareil Mini PII (BIO-RAD). Après le transfert des protéines sur un filtre de nitrocellulose et le blocage des sites non spécifiques par incubation avec du lait délipidé à 3 % dans du Tris 10 mM, NaCl 150 mM, Tween 20 0,1 % (tampon TNT), des bandes de nitrocellulose sont incubées avec le sérum de chats (dilué au 300ème) pendant 2 heures à 37 C. Les anticorps liants sont révélés par incubation avec des IgG de chèvre couplés à de la peroxydase anti-chat (dilution au 1 000ème) suivie par une révélation avec du 4-chloro-1-naphtol (Merck).Les contrôles sont constitués par un lysat de E. coli Y1089 infecté par du Xgtll et par un pool de sérums normaux. c) Analvse comnarative des séquences L'analyse des séquences est réalisée sur ordinateur avec le programme "Salsa". Les multiples alignements comparant la séquence du gag VIF WO avec d'autres séquences de VIF et notamment VIF34TF10 (USA) (TALBOTT et al., 1989), VIF 14 (USA) (OLMSTED et al., 1989), VIF PPR (USA) (PHILLIPS et al., 1990), VIF TM2/GVEPX (JAPON) (KIYOMASU et al., 1991 ; MIYAZAWA et al.), VIF Z1 et VIF Z2 (SUISSE) (MORIKAWA et al., 1991), et FIV 19K1 et FIV l9K2 (SIEBELINK et al., 1992) obtenus à partir de la banque de gènes "GenBank", sont illustrés à la figure 3a et à la figure 3b, dans lesquelles il apparaît que les variations sont, pour la plupart, situées dans la séquence protéique env et sont - séquence FIV WO/séquence FIVZ2 : 8,9 % - séquence FIV WO/séquence isolat Petaluma : 10,2-10,9 % - séquence FIV WO/séquence FIV 19 : 10,8 % - séquence FIV WO/séquence FIVZ1 : 11 % - séquence FIV WO/séquence FIVPPR : 13,6 % - séquence FIV WO/séquence FIVGVEPX : 19 %. Dans la glycoprotéine SU de env, l'hypervariabilité concerne successivement les segments 361-377, qui s'étend de part et d'autre d'une cystéine conservée en position 367, 4 fragments courts 452-455, 466-471, 479485 et 494-496, le dipeptide 541-542 et le segment 553570, qui comprend une cystéine conservée en position 566. Deux zones hypervariables ont également été localisées dans la protéine TM : résidus 710-718 et 832-842. Des régions variables se trouvent dans le domaine N-terminal rev-like, dans la portion C-terminale de la SU et dans la portion C-terminale du domaine transmembranaire hydrophobe de la TM (entre les positions 220 et 286) et présentent une variabilité en dessous du seuil de 10 %. De manière plus précise, de tels peptides comprennent avantageusement, 9 régions variables (régions hypervarialbes+régions variables adjacentes): V1 (résidus 26-72), V2 (résidus 96-174, 23 % de divergence), V3 (résidus 361-422, comprenant la région hypervariable 361391 et la région variable 392-422, 12 % de divergence), V4 (résidus 452-497, 13 % de divergence), V5 (résidus 541-570, 30 % de divergence), V6 (résidus 586-612, 10 % de divergence), V7 (résidus 710-718, 26 % de divergence), V8 (résidus 765-778, 12 % de divergence) et V9 (résidus 832-842, 21 % de divergence), comme le montre la figure 4 qui illustre les domaines variables et les domaines conservés : les domaines conservés sont représentés en blanc, les régions variables en gris, et les régions hypervariables en noir. EXEMPLE 2 : Test de dépistage d'une infection à VIF. Des peptides correspondants aux épitopes immunodominants (SU2, TM2 ou TM3) sont absorbés dans les puits d'une plaque ELISA. Le sérum à tester est incubé à une dilution optimale (prédéterminée lors de la mise au point de 1'E- LISA, en utilisant une série de sérums de chats infectés et de chats SPF). La présence d'anticorps anti-VIF est révélée par des anticorps anti-Ig de chat couplés à de la peroxydase de raifort, en présence d'un substrat chromogène. 1) Protocole onératoire a) Peptides sélectionnés Les peptides sélectionnés sont les peptides P237, P240, P241 et P242 ; ils correspondent respectivement, comme précisé ci-dessus, à - P237, fragment inclus dans TM2, correspondant aux positions 697-705 de la séquence de formule I, - P240, fragment inclus dans SU2, correspondant aux positions 398-408 de la séquence de formule I, - fragments P241 et P242, inclus dans TM3, et correspondant respectivement aux positions 763-770 et 772-779 de la séquence de formule I. Ces différents peptides sont testés séparément, vis-à-vis de 17 sérums issus de chats infectés naturellement, vis-à-vis de 16 sérums de chats infectés expérimentalement avec différentes souches de VIF et visà-vis de sérums de 11 chats négatifs (chats SPF). b) Conditions du test ELISA Les peptides sont utilisés à des concentrations comprises entre 1 et 10 Rg/ml ; pour effectuer le revêtement des plaques de microtitration avec les pep tides, du carbonate de sodium 0,1 M, pH 9,6 PBS ou des microplaques préactivées à la poly-L-lysine sont utilises. La saturation des sites libres est réalisée avec des concentrations différentes de lait dégraissé ou de sérum albumine bovine. Les différents sérums sont dilués de 1:1 à 1:200. Le test se déroule comme suit : 0,25 Fg de peptide dans 50 Ag de carbonate de sodium 0,1 M, pH 9,6 sont adsorbés sur les puits d'une plaque de microtitration (DYNATECH IMMULOND 2) pendant une nuit à 4 C. Les puits sont ensuite lavés trois fois avec du PBS. Les sites d'adsorption résiduels sur les microplaques sont saturés par incubation avec 100 W1 de PBS contenant du lait (1 %) et du Tween 20 (0,1 %) (Tampon ELISA, EB), pendant 2 heures. 50 W1 de sérum de chat dilué sont incubés dans les puits pendant 2 heures à température ambiante. Après lavage trois fois avec du tampon EB, des immunoglobulines-anti-chat conjuguées à la peroxydase (O,5 Ag/ml) (KIRKEGAARD & PERRY LABORATORIES, INC) sont ajoutées pendant une heure à température ambiante. Après 5 lavages au PBS, le conjugué à la peroxydase adsorbé est visualisé avec de l'acide 2,2'-azino-bis (3-éthylbenzthiazoline-6 sulfonique) (ABTS) (Sigma) 0,2 mg/ml dans de l'acide acétique à 0,6 %, pH 4,7 et à une concentration finale (p/v) de H202 de 0,1 %. 2) Résultats Les essais sont réalisés en double. Pour discriminer les réactions positives des négatives, une valeur limite est calculée comme suit P = mNC + 3 x Sd (absorbance moyenne pour des sérums SPF négatifs contrôles (NC) + 3 déviations standard). Les valeurs d'absorbance supérieures à P sont considérées comme indiquant la présence d'anticorps vis-à-vis desdits pep tides. Le test ELISA (figures 5a et 5b, O), utilisant le fragment P240, détecte 100 % des sérums de chats naturellement infectés et 87,5 % des sérums de chats infectés expérimentalement (P = 0,156 (0,084 + 3 x 0,024)). Le fragment P237 (figures 5a et 5b, ) est reconnu par 100 % des sérums de chats infectés naturellement et expérimentalement (P = 0,294 (0,138 + 3 x 0,052)). Le fragment P241 (figures 5a et 5b, ) est réactif vis-à-vis de 94 % des chats naturellement infectés et vis-à-vis de 75 % des sérums de chats infectés expérimentalement (P = 0,443 (0,209 + 3 x 0,078)). Le fragment P242 (figures 5a et 5b, X) est réactif vis-à-vis de 12 % des chats naturellement infectés et vis-à-vis de 17 % des chats expérimentalement infectés (P = 0,359 (0,149 + 3 x 0,070)). Tous les sérums de chats SPF gardent une valeur de P inférieure à celle de chacun des peptides précités. Ces résultats, illustrés à la figure 5 (figure 5a : sérums de chats infectés expérimentalement avec du VIF ; figure 5b : sérums de chats infectés naturellement par du VIF), comme précisé ci-dessus, montrent en particulier qu'un test ELISA dont le réactif est le peptide P237 est hautement spécifique (pas de faux positif) et sensible (tous les sérums de chats infectés de différentes origines sont réactifs). De plus, l'utilisation d'un tel peptide synthétique fournit un réactif pur et peu coûteux pour le diagnostic en routine de l'infection à VIF. En outre, l'absorbance moyenne M des sérums positifs est supérieure pour P237 par rapport aux autres peptides (M237 = 1,042 + 0,110 ; M240 = 0,434 + 0,219 M241 = 0,660 + 0,161 ; M242 = 0,589 f 0,136). Les résultats ci-après montrent également l'intérêt du peptide P237 en tant que réactif dans un test immunodiagnostic 110 sérums de chats infectés naturellement, 61 sérums de chats infectés expérimentalement avec différents isolats de VIF (Tableau IV) et 61 sérums de chats SPF sont testés par ELISA. La valeur limite de cet essai est 0,346 (P = 0,088 + 3 x 0,086). Les 171 sérums de chats infectés par le VIF montrent une réaction positive, alors qu'aucun des chats SPF ne présente de réaction positive. La figure 6 illustre ces résultats (- : chats SPF ; : chats infectés expérimentalement ; + chats infectés naturellement). TABLEAU IV Chats Source(s) Echantillons testés SPF France1 56 Suisse2 5 infectés naturellement avec VIF Francs 89 France3 9 Suisse2 7 Ecosse4 5 inoculés expérimentalement avec des isolats de VIF WO France1 22 Me France1 11 Be France1 8 Le France1 7 Br France1 3 Gi France1 2 Villefranche France3 1 Envnip France3 1 Petaluma France3 4 Aebli Suisse2 1 Gasser Suisse2 1 Ecole vétérinaire de Maisons-Alfort 2 Université de Zurich 3 Institut Pasteur 4 Université de Glasgow EXEMPLE 3 : Evaluation de l'utilisation de P237 pour suivre la cinétique de la réponse immune humorale après infection par VIF. Des échantillons de sérums provenant de 5 chats expérimentalement infectés avec le VIF sont testés avec le test ELISA P237 tel que décrit à l'exemple 2, de manière à définir la période d'apparition des anticorps dirigés contre les glycoprotéines d'enveloppe du VIF (figure 7). Cette figure 7, qui comporte en abscisse le nombre de jours après l'inoculation du virus et en ordonnée, la densité optique à 405 nm, montre que la séroconversion apparaît entre 22 et 26 jours après l'inocula tion du virus. D'autres expériences réalisées sur 18 chats infectés expérimentalement avec d'autres isolats montrent les mêmes résultats. Ainsi que cela ressort de ce qui précède, l'invention ne se limite nullement à ceux de ses modes de mise en oeuvre, de réalisation et d'application qui viennent d'être décrits de façon plus explicite ; elle en embrasse au contraire toutes les variantes qui peuvent venir à l'esprit du technicien en la matière, sans s'écarter du cadre, ni de la portée de la présente invention. REVENDICATIONS 1 ) Peptide et/ou un fragment de peptide, caractérisé en ce qu'il est codé par une séquence nucléotidique ou une combinaison de plusieurs segments nucléotidiques choisie dans le groupe qui comprend les séquences env et les séquences gag issues de n'importe quelle souche de VIF, en ce qu'il est reconnu par les anticorps dirigés contre au moins une souche différente de celle dont provient ledit peptide et/ou par les anticorps produits par des chats infectés naturellement et en ce qu'il présente une capacité d'induction d'une réponse immune cellulaire et/ou de production d'anticorps protecteurs vis-à-vis d'au moins une souche de VIF, chez des chats non infectés. 2 ) Peptide selon la revendication 1, caractérisé en ce que lesdites séquences nucléotidiques sont issues de la souche WO du VIF. 3 ) Peptide selon la revendication 1 ou la revendication 2, caractérisé en ce qu'il comprend 854 aminoacides, présente un poids moléculaire apparent d'environ 90 kDa et correspond à la protéine env du VIF WO. 4 ) Peptide selon la revendication 3, caractérisé en ce qu'il présente une séquence en acides aminés qui répond à la formule I ci-après Met-Ala-Glu-Gly-Phe-Ala-Ala-Asn-Arg-Gln-Trp-Ile-Gly-Phe- Glu-Glu-Ala-Glu-Glu-Leu-Leu-Asp-Phe-Asp-Ile-Ala-Ile-Gln- Met-Asn-Glu-Glu-Gly-Pro-Leu-Asn-Pro-Gly-Val-Asn-Pro-Phe- Arg-Val-Pro-Gly-Ile-Thr-Glu-Ala-Glu-Lys-Gln-Glu-Tyr-Cys* - Asn-Ile-Leu59-Gln-Pro-Lys-Leu-Gln-Asp-Leu-Lys-Gly-Lys Ile-Gln-Glu-Val-Lys-Leu-Glu-Glu-Gly-Asn-Ala-Gly-Lys-Phe Arg-Arg-Ala-Arg-Phe-Leu-Arg-Tyr-Ser-Asp-Glu-Thr-Val-Leu- Ser-Leu-Ile-His101-Leu-Phe-Ile-Gly-Tyr-Cys-Pro-His109 Leu-Cys-Arg-Arg-Hisll4-Glu-Leu-Gly-Ser-Leull9-Arg-Hisl2l- Asp- Ile-Asp-I le-Glu-Ala-Leu-Gln-Glu-Glu-Arg-Tyr-Asn-Asp - Arg-Glu-Lys -Gly-Ile-Thr-Asp-Asn-Ile-Lys -Tyr-Gly-Lys -Arg- Cys * -Leu-Ile-Gly-Thr-Ala-Val -Leu-Tyr-Leu-Leu-Leu-Ser-Leu- Gly-Ile-Ile-Ile-His 168-Thr-Cys-Lys-Ala-Gln-Val-Val-Trp- Argl77-Leu-Pro-Pro-Leu-Val-Val-Pro-Val-Glu-Glu-Ser-Glu Ile-Ile-Phe-Trp-Asp-Cys * -Trp-Ala-Pro-Glu-Glu-Pro-Aîa- Cys * -Gln-Asp-Phe-Leu-Gly-Ala-Met-Ile-His -Leu-Lys -Ala-Ser- Thr-Asn-Ile-Ser-Ile-Gln-Glu-Gly-Pro-Thr-Leu-Gly-Asn-Trp- Ala-Arg-Glu-Ile-Trp-Gly-Thr237-Leu-Phe-Lys-Lys-Ala-Thr- Arg-Gln-Cys -Arg-Arg-Gly-Arg-Ile-Trp-Arg-Arg-Trp-Asn-Glu Thr-Ile-Thr-Gly-Pro-Leu-Gly-Cys * -Ala-Asn-Asn-Thr-Cys * Tyr-Asn-Ile-Ser-Val-Ile-Val-Pro-Asp-Tyr-Gln-Cys* -Tyr-Leu Asp-Arg-Val-Asp-Thr-Trp-Leu-Gln-Gly-Lys-Val-Asn-Ile297 Ser-Leu-Cys -Leu-Thr-Gly-Gly-Lys-Met-Leu-Tyr-Asn-Lys-Glu Thr-Lys-Gln-Leu-Ser-Tyr-Cys*-Thr-Asp-Pro-Leu-Gln-Ile-Pro Leu-Ile-Asn-Tyr-Phe-Gly-Pro-Asn-Gln-Thr-Cys -Met-Trp-Asn Thr-Ser-Gln-Ile-Gln-Asp-Pro-Glu-Ile-Pro-Lys-Cys -Gly-Gly Asn-Gln357-Asn-Ala-Tyr-Tyr-Asn-Ser-Cys*-Arg-Trp-Glu-His Thr-Asp-Val-Gln-Phe-Gln-Cys *-Gln-Arg-Thr-Gln-Ser-Gln-Pro- Gly-Ser-Trp-Ile-Arg-Ala-Ile-Ser-Ser-Trp-Lys-Gln-Arg-Asn Arg-Trp-Glu-Trp-Arg-Pro-Asp-Phe-Glu-Ser-Glu-Lys-Val-Lys Val-Ser-Leu-Gln-Cys*-Asn-Ser417-Thr-Lys-Asn-Leu-Thr-Phe Ala-Met-Arg-Ser-Ser-Gly-Asp-Tyr-Gly-Glu-Val-Thr-Gly-Ala Trp-Ile-Glu-Phe-Gly-Cys * -His-Arg-Thr-Lys-Ser-Lys-Tyr-His- Thr-Glu-Ala-Arg-Phe-Arg-Ile-Arg-Cys * -Arg-Trp -Asn-Val -Gly- Asp-Asn-Thr-Ser-Leu-Ile-Asp-Thr-Cys* -Gly-Glu-Thr477 -Gîn- Asn-Val-Ser-Arg-Ala-Asn-Pro-Val-Asp-Cys -Thr-Met-Tyr-Ala Asn-Arg-Met-Tyr-Asn-Cys * -Ser-Leu-Gln-Asn-Gly-Phe-Thr-Met Lys-Val-Asp-Asp-Leu-Ile-Met-His-Phe-Asn-Lys-Thr-Lys-Ala- Val-Glu-Met-Tyr-Asn-Ile-Ala-Gly-Asn-Trp-Ser-Cys -Lys-Ser Asp-Leu-Pro537 -Pro-Thr-Trp-Gly-Tyr-Met-Asn-Cys * -Asn-Cys * - Thr-Asn-Ser-Thr-Asn-Ser-Gly-Thr-Gly-Ile-Arg-Met-Ala-Cys Pro-Arg-Asn-Gln-Gly-Ile-Leu-Arg-Asn-Trp-Tyr-Asn-Pro-Val Ala-Gly-Leu-Arg-Gln-Ser-Leu-Glu-Lys -Tyr-Gîn-Val-Val-Lys - Gln-Pro-Asp-Tyr-Leu-Val595-Val-Pro-Gly-Glu-Val-Met-Glu Tyr-Lys-Pro-Arg-Arg-Lys-Arg-Ala-Ala-Ile-His-Val-Met-Leu Ala-Leu-Ala-Thr-Val-Leu-Ser-Met-Ala-Gly-Ala-Gly-Thr-Gly- Ala-Thr-Ala-Ile-Gly-Met-Val-Thr-Gln-Tyr-Gln-Gln-Val-Leu- Ala-Thr-His-Gln-Glu-Ala-Ile-Glu-Lys-Val-Thr655-Glu-Ala Leu-Lys -Ile-Asn-Asn-Leu-Arg-Leu-Val-Thr-Leu-Glu-His -Gîn- Val-Leu-Val-Ile-Gly-Leu-Lys-Val-Glu-Ala-Met-Glu-Lys-Phe- Leu-Tyr-Thr-Ala-Phe-Ala-Met-Gln-Glu-Leu-Gly-Cys -Asn-Gln Asn-Gln-Phe-Phe-Cys*-Lys-Val-Pro-Ser-Ala-Lys-Trp-Glu-Arg Tyr-Asn715-Met-Thr-Ile-Asn-Gln-Thr-Ile-Trp-Asn-His-Gly- Asn-Ile-Thr-Leu-Gly-Glu-Trp-Tyr-Asn-Gln-Thr-Lys-Asp-Leu Gln-Gln-Arg-Phe-Tyr-Glu-Ile-Ile-Met-Asp-Ile-Glu-Gln-Asn- Asn-Val-Gln-Gly-Lys-Lys-Gly-Leu-Gln-Gln-Leu-Gln-Glu-Trp Glu-Asp-Trp-Val-Gly-Trp-Ile775-Gly-Asn-Ile-Pro-Gln-Tyr Leu-Lys-Gly-Leu-Leu-Gly-Gly-Ile-Leu-Gly-Ile-Gly-Leu-Gly Met-Leu-Leu-Leu-Ile-Leu-Cys*-Leu-Pro-Thr-Leu-Val-Asp- Cys * -Ile-Arg-Asn-Cys*-Ile-His-Lys-Ile-Leu-Gly-Tyr-Thr- Val-Ile-Ala-Met -Pro-Glu-Val-Glu-Glu-Glu-Glu-Ile-Gln- Pro835-Gln-Met-Glu-Leu-Arg-Arg-Asn-Gly-Arg-Gln-Cys -Gly- Met-Ser-Glu-Lys-Glu-Glu-Glu854 (I) 5.) Peptide selon la revendication 1 ou la revendication 2, caractérisé en ce qu'il comprend 450 aminoacides et présente un poids moléculaire apparent d'environ 50 kDa et correspond à la protéine gag du VIF WO. 6') Peptide selon la revendication 5, caractérisé en ce qu'il présente une séquence en aminoacides qui répond à la formule II ci-après Met gly asn gly gln gly arg asp trp lys met ala ile lys arg cys ser asn gly ala val gly val gly gly lys ser lys lys phe gly glu gly asn phe arg trp ala ile arg met ala asn val ser thr gly arg glu pro gly asp ile pro glu thr leu asp gln leu arg leu val ile cys asp leu gln glu arg arg glu lys phe gly ser ser lys glu ile asp met ala ile ala ala leu lys val phe ala val val gly leu leu asn met thr val ser thr ala ala ala ala glu asn met tyr thr gln met gly leu asp thr arg pro ser thr lys glu ala gly gly lys glu glu gly pro pro gln ala tyr pro ile gln thr val asn gly thr thr gln tyr val ala leu asp pro lys met val ser ile phe met glu lys ala arg glu gly leu gly gly glu glu val gln leu trp phe thr ala phe ser ala asn leu thr pro thr asp met ala thr leu ile met ala arg pro gly cys leu thr gln glu gln gln ala glu ala arg phe ala pro ala arg met gln cys arg ala trp tyr leu glu ala leu gly lys leu ala ala ile lys ala lys ser pro arg ala val gln leu arg gln gly ala lys glu asp tyr ser ser phe ile asp arg leu phe ala gln ile asp gln glu gln asn thr ala glu val lys leu tyr leu lys gln ser leu ser ile ala asn ala asn ala asp cys lys lys ala met ser his leu lys pro glu ser thr leu glu glu lys leu arg ala cys gln glu ile gly phe pro gly tyr lys met gln leu leu ala glu ala leu thr lys val gln val val gln ser lys gly pro gly pro val cys phe asn cys lys arg pro gly his leu ala arg gln cys arg asp val lys lys cys asn lys cys gly lys pro gly his leu ala ala lys cys trp gln gly gly lys lys asn ser gly asn trp lys ala gly arg ala ala ala pro val asn gln val gln gln ala val met pro ser ala pro pro met glu glu lys leu leu asp leu (II) 7 ) Fragments ou combinaisons de fragments de peptide, caractérisés en ce qu'ils incluent des segments du peptide de formule I selon la revendication 4, comprenant entre 5 et 80 aminoacides et au moins un épitope. 8 ) Fragment selon la revendication 7, caractérisé en ce qu'il inclut un segment de 37 aminoacides, dénommé SU1, et correspondant aux positions 253-289 de la séquence de formule I (souche WO). 9 ) Fragment selon la revendication 7, caractérisé en ce qu'il inclut un segment de 37 aminoacides, dénommé SU2, et correspondant aux positions 388-424 de la séquence de formule I. 10 ) Fragment selon la revendication 7, caractérisé en ce qu'il est inclus dans le fragment SU2 selon la revendication 9 et contient au moins un épitope incluant la séquence : Trp398-Glu-Trp-Arg-Pro-Asp-Phe Glu-Ser-Glu-Lys408 (peptide dénommé P240). 11 ) Fragment selon la revendication 7, caractérisé en ce qu'il inclut un segment de 26 aminoacides, dénommé SU3, et correspondant aux positions 467-492 de la séquence de formule I. 12-) Fragment selon la revendication 7, caractérisé en ce qu'il inclut un segment de 21 aminoacides, dénommé SU4, et correspondant aux positions 508-528 de la séquence de formule I. 13") Fragment selon la revendication 7, carac térisé en ce qu'il inclut un segment de 35 aminoacides, dénommé SU5, et correspondant aux positions 572-606 de la séquence de formule I. 14") Fragment selon la revendication 7, caractérisé en ce qu'il inclut un segment de 51 aminoacides, dénommé TM1, et correspondant aux positions 595-647 de la séquence de formule I. 15 ) Fragment selon la revendication 7, caractérisé en ce qu'il inclut un segment de 31 aminoacides, dénommé TM2, et correspondant aux positions 681-711 de la séquence de formule I. 16-) Fragment selon la revendication 7, caractérisé en ce qu'il est inclus dans le fragment TM2 selon la revendication 15 et contient au moins un épitope incluant la séquence Cys697 -Asn-Gln-Asn-Gln-Phe-Phe-Cys- Lys705 (peptide dénommé P237). 17-) Fragment selon la revendication 7, caractérisé en ce qu'il inclut un segment de 45 aminoacides, dénommé TM3, et correspondant aux positions 744-788 de la séquence de formule I. 18 ) Fragment selon la revendication 7, caractérisé en ce qu'il est inclus dans le fragment TM3 selon la revendication 17 et contient au moins un épitope incluant la séquence Gîn763 -Gln-Leu-Gln-Glu-Trp-Glu- Asp770 (peptide dénommé P241). 19 ) Fragment selon la revendication 7, caractérisé en ce qu'il est inclus dans le fragment TM3 selon la revendication 17 et contient au moins un épi tope incluant la séquence Val772-Gly-Trp-Ile-Gly-Asn-Ile Pro779 (peptide dénommé P242). 20') Fragment selon la revendication 7, caractérisé en ce qu'il inclut un segment de 29 aminoacides, dénommé TM4, et correspondant aux positions 826-854 de la séquence de formule I. 21 ) Composition à pouvoir immunogène et/ou protecteur, caractérisée en ce qu'elle comprend au moins un peptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 20, éventuellement associé à au moins une autre substance immunogène ou immunostimulante et/ou un véhicule pharmaceutiquement acceptable. 22 ) Procédé de détection d'anticorps anti VIF, caractérisé en ce qu'il consiste à détecter les anticorps anti-VIF éventuellement présents dans un échantillon biologique à l'aide d'un peptide ou fragment de peptide selon l'une quelconque des revendications 1 à 20, éventuellement fixé sur un support solide approprié, en mettant en présence ledit échantillon biologique avec ledit/lesdits peptides ou fragment(s) de peptides, auxquels se lient les anticorps anti-VIF si de tels anticorps sont présents dans l'échantillon à analyser, la lecture du résultat étant révélée par un moyen approprié, notamment EIA, RIA, fluorescence. 23 ) Kit, prêt à l'emploi, pour la mise en oeuvre du procédé de détection d'anticorps anti-VIF selon la revendication 22, caractérisé en ce qu'il comprend, outre des quantités utiles de tampons appropriés pour la mise en oeuvre de ladite détection, des doses appropriées d'au moins un peptide et/ou un fragment peptidique selon l'une quelconque des revendications 1 à 20. 24 ) Réactif de diagnostic de l'immunodéficience féline, caractérisé en ce qu'il est choisi dans le groupe constitué par les fragments SU selon l'une quelconque des revendications 8 à 13 et les fragments TM selon l'une quelconque des revendications 14 à 20. 25 ) Réactif de diagnostic selon la revendication 24, caractérisé en ce qu'il est choisi dans le groupe constitué par l'un des fragments SU2 selon la revendication 9 ou la revendication 10, l'un des frag ments TM2 selon la revendication 15 ou la revendication 16 et l'un des fragments TM3 selon la revendication 17, 18 ou 19 et en ce qu'il constitue un réactif de diagnostic universel de souche de VIF. 26 ) Réactif de diagnostic selon la revendication 24, caractérisé en ce qu'il est choisi dans le groupe constitué par le fragment SU3 selon la revendication 11 et le fragment TM4 selon la revendication 20 et en ce qu'il constitue un réactif de diagnostic spécifique de la souche WO de VIF.