Brevet FR2680373A1 — publié le 19930219

La présente invention concerne un procédé de fabrication enzymatique stéréospécifique d'aglucosides à partir de matières premières peu coûteuses et disponibles en grande quantité, notamment l'amidon et les maltodextrines ainsi que directement à partir de matières premières agricoles pouvant les contenir telles que farines ou semoules. L'amidon est très largement distribué dans la nature. En effet, il constitue un aliment important pour les plantes et de grandes quantités sont mises en réserve par les organismes végétaux, afin d'entretenir la vie de la tige ou du tubercule pendant le repos hivernal et d'assurer le développement de l'embryon au cours de la germination. Compte tenu de l'abondance de cette substance, de nombreuses tentatives de valorisation industrielle ont été faites, la plupart d'entre elles impliquant une réaction d'hydrolyse. L'amidon est hydrolysé par les acides dilués, l'hydrolyse acide totale fournissant du D-glucose. Des fragments de poids moléculaire plus élevé, les dextrines, sont obtenus par hydrolyse acide contrôlée et par l'action de la température. L'amidon peut également être hydrolysé par des enzymes (amylases). Les produits d'hydrolyse de l'amidon peuvent servir dans la fabrication de glucosides. Ces composés, en particulier, les alkyl-glucosides, sont utiles comme surfactants et détergents non-ioniques biodégradables. Ils peuvent être utilisés comme agents émulsifiants dans des produits pharmaceutiques, cosmétiques et alimentaires. La synthèse chimique des alkylglucosides à partir de glucose a déjà été décrite (par exemple, EP A-0301298). Ce genre de procédé chimique peut comporter cependant un nombre très élevé d'étapes différentes et fournit toujours un mélange anomérique d'a/p-alkylmono- et alkylpolyglucosides. Ces mélanges ne possédant pas de propriétés physico-chimiques particulières présentent tous les inconvénients qui y sont attachés. La fabrication enzymatique d'alkylglucosides à partir de maltose a également été proposée (S.C. Pan, Biochemistry, vol. 9, n 8, 1970, pp 1833-1838 et Itano K. et al, Carbohydrate Research, 87, 1990, 27-34). Pan décrit la transglucosylation d'un alcool tel que le butanol avec, comme donneur de glucose, le maltose, en présence d'un surnageant de culture d'Aspergillus niger. L'identité de(s) l'enzyme(s) contenue(s) dans le surnageant et responsable(s) de la transglucosylation n'a pas été recherchée. La configuration anomérique (a ou p) des alkylglucosides obtenus n'a pas été vérifiée. Itano décrit la production enzymatique de l'a-glucoside de cyclohexanediol utilisant, comme donneur de glucose, le maltose, et comme accepteur de glucose, le trans-1,2-cyclohexanediol.Cette réaction met en oeuvre un mélange grossier de différentes enzymes utilisées dans l'industrie agro-alimentaire, dont la plupart sont des hydrolases. Ces préparations contiennent, en outre, des enzymes non-identifiées. Les rendements obtenus selon ces procédés enzymatiques sont faibles et ne permettent pas une synthèse des alkylglucosides à l'échelle industrielle. Par ailleurs, la configuration anomérique des produits obtenus est parfois imprévisible en raison des nombreuses enzymes présentes pendant la réaction et notamment en raison d'une activité p-glucosidase non identifiée. Finalement, Fogarty et al (Biotechnology Letters, vol. 4, 1, 61-64, 1982) décrit la production d'a glycéroîglucoside par la transglucosylation enzymatique de glycérol avec, comme donneur de glucose, l'a-méthylglucoside. L'enzyme mise en oeuvre dans cette réaction est la transglucosidase purifiée d'A. niger. Dans les conditions décrites, le glycérol ne peut jouer le rôle d'accepteur de glucose qu'avec un nombre très limité de substrats. Ces résultats montrent que la transglucosidase, comme beaucoup de transférases, est capable d'agir sur un nombre relativement élevé d'accepteurs, mais qu'en revanche, le nombre de substrats ou donneurs dont elle peut se servir est très limité et imprévisible. L'objet de la présente invention est de fournir une méthode de fabrication stéréospécifique d'aglucosides donnant lieu à des rendements élevés appropriés pour une exploitation à l'échelle industrielle et permettant d'utiliser, comme matières premières, de l'amidon ou des maltodextrines ainsi que des matières premières agricoles à forte teneur en amidon telles que des farines ou des semoules. La méthode recherchée doit être simple, directe et peu coûteuse. Un autre objet de l'invention est de fournir un procédé de traitement de matières amylacées brutes telles que l'amidon ou les maltodextrines, permettant la production de composés à haute valeur ajoutée. De manière surprenante, les inventeurs ont maintenant constaté que des a-glucosides peuvent être fabriqués à l'échelle industrielle par atransglucosylation enzymatique, en utilisant comme substrats ou "donneurs de glucose" l'amidon ou des maltodextrines, et comme co-substrats ou "accepteurs de glucose", des alcools. Il est tout a fait inattendu que des molécules polymériques, telles que l'amidon ou les amaltodextrines, puissent jouer le rôle de donneurs de glucose dans cette réaction. Comme indiqué ci-dessus, l'a-transglucosidase peut effectuer le transfert d'un résidu glucosyl sur un nombre relativement élevé d'accepteurs (l'alcool dans le cas actuel), mais ne peut utiliser, comme substrats, que très peu de molécules. L'invention concerne, plus particulièrement, un procédé de fabrication enzymatique d'a-glucosides, caractérisé par la mise en contact d'au moins un alcool dont le(s) seul(s) groupement(s) fonctionnel(s) est(sont) un(des) groupement(s) hydroxyl, avec de l'amidon, des maltodextrines ou du maltose, en présence d'une préparation enzymatique purifiée présentant une activité d'a-transglucosylation. Les produits obtenus par ce procédé sont des aglucosides constitués d'au moins une molécule de glucose et d'un alcool, dont la chaîne carbonée est de longueur et de structure variables selon le type d'alcool ayant participé à la réaction. Le produit est dépourvu de p-glucoside. La biosynthèse est effectuée dans des conditions de réaction peu agressives, à température moyenne (20"C à 70 C, par exemple entre 30"C et 60"C) et à pH compris entre 3 et 7, de préférence 4 et 6. La formation de produits de dégradation du glucose est ainsi évitée. Dans le contexte de l'invention, une préparation enzymatique "présentant une activité d'atransglucosylation" signifie n'importe quelle préparation enzymatique capable d'effectuer le transfert d'une molécule de glucose (à partir de matières premières constituées d'amidon ou contenant de l'amidon, ou constituées d'hydrolysats d'amidon ou contenant des hydrolysats d'amidon) sur l'alcool. Par purifiée, il faut comprendre - que la préparation enzymatique est dépourvue de toute autre activité enzymatique capable dans les conditions utilisées de catalyser la production de substances autres que les a-glucosides, - que la préparation enzymatique est telle qu'elle évite la formation de produits secondaires, - que la préparation enzymatique est dépourvue notamment d'activité p-glucosidase. La préparation enzymatique peut être constituée d'une seule enzyme présentant une activité d'atransglucosylation. La préparation enzymatique peut également être constituée de plusieurs enzymes telles que soit chacune d'elles a une activité d'atransglucosylation soit leurs activités enzymatiques mises en commun sont telles qu'elles confèrent à la susdite préparation enzymatique une activité d'a-transglucosylation. Il peut s'agir d'une "authentique" atransglucosidase, également connue comme "a transglucosylase", c'est-à-dire une enzyme de type transférase. Ce type d'enzyme est normalement reconnu par sa capacité à synthétiser, en milieu dilué (par exemple, 100 g/L maltose) des oligosaccharides. Comme a-transglucosidases, on peut citer les atransglucosidases fongiques telles que celles provenant d'Aspergillus niger, A. batatae, A. oryzae ou Talaromyces duponti. Les a-transglucosidases d'Aspergillus niger et de Talaromyces duponti sont particulièrement préférées. Il est avantageux d'utiliser ces enzymes sous forme purifiée, la préparation étant ainsi dépourvue de toute activité p-glucosidase. La présence de P-glucosidase dans la préparation enzymatique empêche, en effet, la synthèse stéréospécifique des a-glucosides. L'a-transglucosidase d 'Aspergillus niger, disponible sous le nom commercial de TRANGLUCOSIDASE-L (Amano Pharmaceutical Corporation Ltd, Japon), est normalement dépourvue de ss-glucosidase et peut être utilisée dans le procédé de l'invention sans purification supplémentaire. En revanche, celle de Talaromyces duponti (également connue sous le nom de 1, 4-a-D-glucan-6-a-D-glucosyltransférase) est avantageusement soumise à une étape supplémentaire de purification, par échange d'ions, afin d'éliminer la p-glucosidase, mais présente l'avantage d'une grande thermostabilité. Cette enzyme est décrite dans la demande de brevet européen EP-A-0219673. Il est également possible d'utiliser un mélange d'enzymes purifiées, par exemple les atransglucosidases de différents types de champignons, à condition que d'autres enzymes ne soient pas présentes et que les différentes enzymes fonctionnent dans les mêmes conditions. L'enzyme présentant une activité dta- transglucosylation peut aussi être une hydrolase purifiée qui possède, comme propriété "marginale", la capacité d'effectuer des réactions de atransglucosylation. Ce type d'enzyme peut généralement être reconnu par sa capacité de former, en milieu dilué (par exemple, 100 g/L maltose) du glucose. Comme exemples de ce type d'enzyme, on peut citer les hydrolases telles que l'a-glucosidase. Bien que ces enzymes soient capables d'effectuer d'autres types de réactions que l'atransglucosylation, le milieu réactionnel composé uniquement d'amidon, de maltodextrines ou de maltose, et de l'alcool favorise la formation des a-glucosides. Comme substrats ou "donneurs de glucose", il est possible d'utiliser, selon l'invention, l'amidon, des maltodextrines ou du maltose ou un mélange de ces substances, ainsi que des matières premières agricoles pouvant contenir ces substances. Lorsqu'on utilise le maltose comme substrat, il peut être présent sous forme de mélange avec d'autres substances provenant de matières amylacées, par exemple, lorsque le substrat est un hydrolysat partiel d'amidon, le maltose peut être présent avec des maltodextrines. Le maltose peut aussi être utilisé seul. Les rendements en a-glucoside obtenus à partir du maltose sont parfois moins importants que ceux obtenus à partir des autres types de substrats. Les maltodextrines constituent un substrat ou "donneur de glucose" particulièrement préféré selon le procédé de l'invention. Ce sont des hydrolysats partiels d'amidon, constitués d'un mélange d'oligosaccharides de masse molaire variable et présentant uniquement des liaisons a-1,4 entre les unités de glucose. Les maltodextrines peuvent provenir d'une hydrolyse partielle acide de l'amidon ou d'un traitement thermique ou enzymatique de l'amidon. Ce type de produit est aussi disponible dans le commerce et, en raison de sa pureté, est particulièrement préféré lorsque les a-glucosides obtenus sont destinés à être utilisés dans l'industrie pharmaceutique. Selon une autre variante du procédé de l'invention, le substrat, ou "donneur de glucose", peut aussi être de l'amidon soluble. Ce produit, assimilable aux maltodextrines, est constitué d'amidon rendu soluble par préhydrolyse acide, par exemple selon le procédé de Lintner. Selon un autre mode de réalisation particulièrement préféré de l'invention, le substrat est constitué d'amidon natif. Comme sources d'amidon natif, on peut citer les céréales, les tubercules et les légumineuses, ainsi que toute autre plante. Parmi les céréales préférées, on peut citer le blé, le maïs, l'orge, l'avoine, le riz, le seigle, le triticale (hybride de seigle et de blé) le sarrasin et le sorgho. Les tubercules préférées sont les pommes de terre et le manioc. Les pois et les féveroles sont source d'amidon de légumineuses. Les céréales peuvent être utilisées sous forme de grains entiers, de fractions de grains (résultant, par exemple, d'un traitement enzymatique, chimique, thermique ou mécanique du grain), ou de tout autre produit issu du broyage du grain, tel que la farine ou la semoule. Lorsque le substrat est l'amidon natif, l'action de l'enzyme capable d'effectuer l'a-transglucosylation est associée à l'action d'une hydrolase, afin de rendre l'amidon accessible à l'a-transglucosylation. L'hydrolase libère, dans le milieu, des maltodextrines et du maltose à partir de l'amidon natif. Ces substrats sont alors utilisés comme donneurs de glucose par l'a-transglucosidase qui glucosyle les alcools présents dans le milieu. De préférence, l'hydrolase est utilisée simultanément avec l'atransglucosidase. Comme hydrolases, il est préférable d'utiliser des endo-amylases, par exemple l'a-amylase (E.C 3.2.1.1), provenant, par exemple, de champignons ou de Bacillus licheniformis. Les endo-amylases ont l'avantage d'effectuer des coupures "endo" dans la molécule de l'amidon, sans libérer de molécules de faible masse moléculaire (c'est-à-dire le glucose). En effet, les a-transglucosidases ne sont pas capables d'utiliser le glucose comme substrat. La production de glucose par l'amylase empêcherait donc la fabrication ultérieure d'a-glucosides. En ce qui concerne le maltose, bien qu'il puisse servir de substrat pour l'a-transglucosidase, le rendement d'alkylglucoside ainsi obtenu est plus faible qu'avec les maltodextrines ou l'amidon. Le rapport entre le glucose transférable et le glucose inutilisé est plus élevé dans le cas d'une maltodextrine que dans le cas du maltose. Une utilisation simultanée de l'amylase et de la a-transglucosidase est préférée, une compétition pour les molécules solubles s'établissant entre les deux enzymes. Le déroulement simultané des deux procédés enzymatiques conduit ainsi à une amélioration du rendement. L'efficacité de l'amylase sur l'amidon varie selon l'origine botanique de l'amidon et selon la nature de l'amylase. Les concentrations relatives du substrat, de l'enzyme et de l'alcool sont - pour le substrat, d'environ 10g/l à environ 800g/l et notamment d'environ 100g/l à environ 400g/l - pour les alcools, d'environ 10g/l à environ 800g/l, et notamment d'environ 50g/l à environ 400g/l - pour l'enzyme d'environ 5 U/ml à environ 1000 U/ml, et notamment d'environ 50 U/ml à environ 200 U/ml. L'accepteur de glucose selon l'invention est un alcool de fonction simple, c'est-à-dire, un alcool qui ne porte pas de groupements fonctionnels autres que les groupements hydroxyl. On peut utiliser un mélange d'alcools différents. Tous les alcools capables de jouer le rôle d'accepteurs de glucose dans la réaction et qui n'inhibent pas l'activité de l'enzyme peuvent être utilisés. Les alcools préférés sont les alcanols, les alcools éthyléniques, les alcools acétyléniques, les alcools cycliques ou les phénols. Les alcools acycliques sont particulièrement préférés, notamment les alcanols saturés ayant par exemple entre 2 et 24 atomes de carbone, et les polyols saturés. Selon le procédé de l'invention, l'alcool peut être un alcool monohydrique, ou peut être aussi un polyol, par exemple un diol ou un triol. Les diols sont particulièrement préférés tels que les propanediols et les butanediols. Les alcools primaires, secondaires et tertiaires peuvent servir dans la réaction de l'invention, les primaires et secondaires étant particulièrement avantageux. Il peut s'agir d'un alcool miscible ou au moins partiellement soluble dans l'eau. Dans ce cas l'alcool présente avantageusement, une solubilité d'au moins 2.7 % v/v à 20 C. Dans la plupart des cas, ces alcools possèdent entre 1 et 6, et souvent entre 1 et 5 atomes de carbone. Comme exemples d'alcools solubles préférés, on peut citer : l'isopropanol, le n-butanol, l'isobutanol, l'iso-pentanol, le propanol, le pentane-diol, l'hexane-diol, le butène-l-ol-3, le butyne-l-ol-3, le cyclohexanol... ou un mélange d'au moins deux de ces alcools. La réaction se poursuit en milieu aqueux, l'alcool étant souvent utilisé à la limite de sa solubilité. Lorsque l'alcool est partiellement soluble dans l'eau, il est possible d'effectuer le procédé de l'invention dans un milieu à deux phases, c'est-à-dire une phase aqueuse dans laquelle le ou les alcools sont dissous à une concentration inférieure à la limite de leur solubilité, et une phase organique en équilibre avec la phase aqueuse et composée de l'alcool saturé de tampon. L'utilisation d'un milieu à deux phases exerce un effet favorable sur le rendement en aglucosides. Ce système est particulièrement avantageux lorsque l'a-glucoside obtenu par la réaction de atransglucosylation peut, à partir d'une certaine concentration, constituer un substrat pour l'enzyme. Par exemple, l'a-butylglucoside peut jouer le rôle de substrat pour l'a-transglucosidase. Dans ce cas, la réaction se déroule dans la phase aqueuse, et 1'au glucoside est extrait depuis la phase aqueuse vers la phase organique, empêchant la destruction du glucoside par l'enzyme. L'utilisation d'un alcool éthylénique tel que le butène-l-ol-3 conduit à la présence d'une liaison non-saturée dans le glucoside. Ceci permet l'utilisation ultérieure du glucoside dans des réactions de polymérisation. Selon un mode de réalisation particulièrment avantageux, l'alcool soluble est un alcanol monohydrique ayant de 1 à 5 atomes de carbone. Ces alcools donnent lieu à des a-alkylglucosides, dont la chaîne alkyle a de 1 à 5 atomes de carbone. Il est également possible d'utiliser des alcools insolubles dans l'eau, par exemple, des alcanols ayant plus de six atomes de carbone, en particulier entre 12 et 18 atomes de carbone ou encore des alcools gras (alcools aliphatiques primaires) tels que le dodécylalcool, le tétradêcylalcool, l'hexadécylalcool, l'octadécylalcool, le décylalcool, l'undécylalcool et le tridécylalcool, etc... Comme alcools insolubles dans l'eau, on peut également citer les stéroïdes. L'utilisation des alcools gras est avantageusement accompagnée de l'utilisation d'alcools courts (1 à 6 atomes de carbone) partiellement solubles dans l'eau, qui jouent le rôle de solvants des alcools gras et d'accepteur de glucose. Les alcools hydrophobes, tels que ceux cités cidessus, peuvent participer à la réaction d'atransglucosylation enzymatique en utilisant un système à deux phases (c'est-à-dire, de l'eau et un solvant organique). L'alcool hydrophobe est donc dissous dans un solvant tel que le nitrobenzène, tandis que le substrat et l'enzyme sont dissous dans une solution aqueuse. Les deux solutions sont ensuite mélangées et agitées. L'a-transglucosylation a lieu à l'interphase. Il est également possible d'utiliser d'autres solvants organiques, par exemple l'acétone, à condition que l'activité de l'enzyme ne soit pas affectée. En raison des propriétés tensioactives des aalkylglucosides dont la chaîne alkyle présente entre 12 et 18 atomes de carbone, l'utilisation, comme alcool, des alcools gras est particulièrement préférée. Les produits obtenus par le procédé de l'invention sont stéréospécifiques (a) et sont normalement des monoglucosides. Il est possible, en ajoutant par exemple au milieu réactionnel un a alkyîglucoside comme substrat "supplémentaire", de provoquer la formation de diglucosides, c'est-à-dire des maltosides. Ces maltosides présentent des propriétés très proches de celles des glucosides. La stéréospécificité du produit peut être vérifiée en effectuant l'hydrolyse d'un échantillon avec une enzyme ne pouvant agir que sur les anomère a, par exemple l'a-glucosidase. La maltase est un exemple d'a-glucosidase appropriée pour cette vérification. En raison de l'absence d'anomère p dans le produit de l'invention, certaines caractéristiques physiques, telles que le point de fusion et la solubilité du glucoside, sont définies très étroitement. Cette précision est avantageuse pour une utilisation dans l'industrie pharmaceutique, cosmétique et chimique en général. De plus, l'enzyme utilisée lors de l'atransglucosylation est à l'état purifié. Le produit de l'invention est donc dépourvu de contaminants issus de réactions enzymatiques secondaires. La nécessité d'effectuer de nombreuses étapes de purification des produits de la réaction est donc éliminée. L'invention concerne également les a-glucosides, en particulier les a-alkylglucosides tels qu'obtenus par le procédé de l'invention. Ces produits sont donc caractérisés par l'absence de contaminants normalement associés aux glucosides produits par voie chimique ou par voie enzymatique utilisant des mélanges d'enzymes. L'a-butylglucoside est un produit particulièrement préféré de l'invention. Les glucosides produits selon l'invention ont une multiplicité d'applications. Les alkylglucosides, en particulier ceux dont la chaîne alkyle possède jusqu'à 6 atomes de carbone, par exemple 1'a-butylglucoside, peuvent être utilisés comme additifs de détergents liquides ou d'émulsions pour modifier la viscosité sans provoquer de séparation de phases. En effet, la présence de groupes hydrophobes et hydrophiles dans ces molécules permet leur utilisation dans des émulsions, par exemple des crèmes cosmétiques et pharmaceutiques, pour modifier les propriétés d'une émulsion, sans la déstabiliser. Les glucosides de l'invention étant fabriqués par une biosynthèse à partir de matières naturelles, ils sont particulièrement adaptés aux applications cosmétiques et pharmaceutiques de ce type. Les alkylglucosides, et en particulier l'abutylglucoside, peuvent aussi être utilisés comme additifs dans l'industrie des plastiques, des caoutchoucs et PVC par exemple, comme assouplissants dans les résines mélaminiques. L'utilisation de l'abutylglucoside empêche la résine d'avoir un caractère excessivement cassant. Ils peuvent également être utilisés comme additifs dans des compositions de nettoyant industriel. Les alkylglucosides de l'invention ayant des chaînes alkyles courtes (C1 à Q) peuvent servir comme matières premières dans la fabrication d'agents tensioactifs, par exemple en remplaçant la chaîne alkyle par une chaîne alkyle ayant au moins 8, et de préférence au moins 12, atomes de carbone. Ces alkylglucosides de chaîne alkyle longue présentent d'excellentes propriétés émulsifiantes, moussantes et sont biodégradables. Un autre type d'agent tensioactif peut être produit par l'estérification, de préférence dans les positions C2 et Q, des alkylglucosides inférieurs de l'invention. Les émulsifiants ainsi obtenus ont des propriétés hydratantes et sont également biodégradables. Les alkylglucosides, dont la chaîne alkyle possède au moins 8 atomes de carbone, sont utiles comme surfactants et détergents non-ioniques biodégradables, présentant des propriétés moussantes, lubrifiantes, émulsifiantes et hydratantes. Puisqu'ils sont stéréospécifiques et sont obtenus par un procédé de synthèse enzymatique à partir de matières végétales, les produits de l'invention sont particulièrement appropriés à une utilisation pharmaceutique, cosmétique ou alimentaire, par exemple comme agents émulsifiants non toxiques et non irritants. Les glucosides de l'invention constituent aussi une excellente matière première dans la fabrication de polyétherpolyols, par exemple, des mousses rigides à base de polyuréthane. Les produits ainsi obtenus ont une thermostabilité améliorée et d'excellentes propriétés physiques. Les glucosides, en particulier les alkylglucosides, peuvent également être utilisés comme polyols dans la fabrication de résines alkydes et de polyesters. Les figures montrent différents aspects de l'invention, notamment - la figure 1 montre la production de glucose et d'abutylglucoside à partir de maltodextrines à l'aide de la a-transglucosidase de Talaromyces duponti. - la figure 2 illustre des chromatogrammes HPLC du milieu de synthèse d'a-butylglucoside avec la transglucoside d'Asperqillus niger à partir d'amidon insoluble : milieu à une phase liquide. a) durée de réaction : 10 mn b) durée de réaction : 23 heures c) mélange a-p-butylglucoside. - la figure 3 illustre des chromatogrammes HPLC du milieu de synthèse d'a-butylglucoside avec la transglucoside d'Aspergillus niger à partir d'amidon insoluble : milieu à deux phases liquides a) durée de réaction : 10 mn b) durée de réaction : 7 heures EXEMPLES Exemple 1 : Production d'a-butylglucoside à partir de substrats amylacés solubles en présence de butanol à l'aide de l'a-transglucosidase de Talaromyces duponti a) Dosage de l'activité a-transglucosidase Le dosage de l'activité a-transglucosidase est effectué à 60"C dans le milieu suivant - maltose : 100 g/l - Tampon acétate de sodium pH 4,5 : 50 mM - a-Transglucosidase : 1 U/ml Le milieu est analysé après 15 et 24 heures de réaction par une technique HPLC (colonne DIONEX Carbopack, détection ampérométrique) permettant la séparation et la détection du panose formé au cours de la réaction. 1 unité de a-Transglucosidase (U) est la quantité d'enzyme qui catalyse la production d'1 micromole de panose (6-0-a-D-glucopyranosyl-maltose) par heure dans les conditions présentées ci-dessus. b) Production d'a-butylqlucoside : La production d'a-butylglucoside est effectuée dans le milieu aqueux de composition suivante - Butanol : 9 % (v/v) - Tampon acétate de sodium pH 4.5 : 50 mM - a-Transglucosidase de Talaromyces duponti : 100 U/ml - Substrat : 100 g/l Ce milieu est incubé à la température de 50OC pendant 70 heures. Des prélèvements sont effectués, dilués (1/10) dans l'eau, chauffés à 90"C pour arrêter la réaction, puis analysés par chromatographie liquide à haute performance (CLIP) sur une colonne de résine échangeuse d'ions sous forme calcium. L'éluant est l'eau ultrapure. Dans ces conditions d'analyse, l'a-butylglucoside est séparé du ss-butylglucoside et des mono- et oligosaccharides. L'aire du pic correspondant permet de calculer la concentration d'a-butylglucoside dans le milieu réactionnel et le rendement de transfert de glucose défini de la façon suivante a-butylglucoside, mM (a-butylglucoside + glucose), mM Les résultats sont présentés dans le tableau 1 Tableau 1 : a-butylglucoside produit à partir de substrats solubles et rendements de transfert après 70 heures de réaction. Substrat a-Butylglucoside, Rendement, en mM en % en inM en % Maltose 21 10 Maltopentaose 50 15 Maltodextrines 48 19 Amidon soluble 40 15 La production d'a-butylglucoside et de glucose a été suivie au cours de la réaction. L'évolution de la concentration de ces deux produits est indiquée sur la figure 1. La production d'a-butylglucoside a lieu avec les quatre substrats amylacés testés dans cet exemple. Avec les maltodextrines, la concentration d'abutylglucoside est supérieure à 10 g/l. Exemple 2 : Production d'a-butylglucoside à partir d'amidon insoluble en présence de butanol à l'aide de la a-transglucosidase de Talaromyces duponti. Le milieu réactionnel est constitué, comme dans l'exemple 1. Le substrat est ici l'amidon insoluble. On rajoute dans le milieu de l'a-amylase de Bacillus licheniformis (5 U/ml), afin de permettre l'utilisation des substrats insolubles. Les prélèvements du milieu réactionnel sont traités comme dans l'exemple 1, mais centrifugés et filtrés avant l'injection HPLC. Les résultats sont présentés dans le tableau 2 Tableau 2 : a-butylglucoside produit à partir amidon insoluble et rendements de transfert après 70 heures de réaction. Substrat a-butylglucoside, Rendement, en mM en % en mM en % Amidon insoluble + a-amylase 28 16 L'amidon insoluble peut aussi être utilisé comme substrat de la réaction. Exemple 3 : Production d'a-butylglucoside à partir de substrats amylacés insolubles dans un milieu à deux phases liquides à l'aide de l'a transglucosidase de Talaromyces duponti. Le milieu réactionnel est constitué de deux phases liquides de composition suivante Phase aqueuse (volume : 0,5 ml) - Butanol : 9 t (v/v) - Tampon acétate de sodium pH 4.5 : 50 mM - a-Transglucosidase de Talaromyces duponti : 100 U/ml - a-amylase : 5 à 500 U/ml - Substrat : 100 g/L Phase organique (volume : 0,5 ou 2 ml) - Butanol saturé de tampon acétate de sodium 50 mM, pH 4.5. Les milieux réactionnels sont vigoureusement agités avant chaque prélèvement, puis traités comme dans l'exemple 2. Plusieurs milieux ont été expérimentés avec deux volumes réactionnels et deux préparations d'a-amylase. L'influence de la teneur en a-amylase du milieu a aussi été étudiée. Les résultats d'analyse HPLC des milieux réactionnels sont présentés dans les tableaux 3 et 4 Tableau 3 : a-butylglucoside produit et rendements de transfert après 70 heures de réaction en milieu à deux phases liquides (a amylase de Bacillus licheniformis, 5 U/ml) Substrat volume réactionnel, a-butylglucoside, Rendement, ml mM Amidon insoluble 1 46 23 1 46 23 Amidon insoluble 2,5 25 23 2,5 25 23 Tableau 4 : a-butylglucoside produit et rendements de transfert à partir de farine de maïs à l'aide de la a-transglucosidase de Talaromyces duponti en milieu à deux phase liquides (volume réactionnel : 1 ml) Origine et acti- a-butylglucoside, Rendement, vité de mM l'a-amylase 1 'a-amylase B. licheniformis 14 24 5 U/ml 5 U/mî B. licheniformis 50 U/ml 15 19 50 U/mî 15 19 B. licheniformis 500 U/ml 9 14 A. niger A. niqer 5 U/ml 10 14 A. niger A. niqer 50 U/ml 12 17 A. niger A. niqer 500 U/ml 9 19 500 U/ml 9 19 L'utilisation de farine de céréales brute est tout à fait possible pour la synthèse d'abutylglucoside à l'aide de l'a-transglucosidase de Talaromyces duponti. L'utilisation d'un milieu à deux phases liquides permet d'améliorer la production d'a-butylglucoside. Dans le tableau 3, on voit que 46 moles d'abutylglucoside ont été synthétisées dans le milieu de volume 1 ml, alors que 62.5 moles ont été synthétisées dans le milieu de 2.5 ml à partir de la même quantité de substrat et d'enzymes. Exemple 4 : Production d'a-alkylglucosides à partir de substrats amylacés solubles à l'aide de l'a transglucosidase de Talaromyces duponti en présence d'un mélange d'alcools. Trois milieux ont été constitués de la façon suivante - Maltodextrines : 100 g/l - a-Transglucosidase de Talaromyces duponti : 100 U/ml - Tampon acétate de sodium pH 4.5 : 50 mM Les trois milieux contiennent un mélange de monoalcools Essai 1 Essai 2 Essai 3 Butanol 9 % 45 % Pentanol - - 25 % Isopropanol - 25 % 45 % Eau 91 % 30 % 30 % Les milieux ont été incubés à 50"C pendant 120 heures puis analysés selon la méthode décrite dans l'exemple 1.Les résultats d'analyse sont indiqués dans le tableau 5 Tableau 5 : Alkylglucosides produits en présence de mélanges d'alcools (volume réactionnel : 1 ml) Essai 1 Essai 2 Essai 3 a-butylglucoside, g/L 10 5 g/t 10 5 - Isopropyl-glucoside, g/L - 2 6 g/t 2 6 Pentyl-glucoside, g/t - 2 Exemple 5 : Production d'a-butylglucoside à partir d'amidon insoluble à l'aide de 1'a-transglucosidase d ' Aspergillus niger Deux milieux ont été constitués puis incubés selon le protocole indiqué dans l'exemple 3. Milieu à une phase aqueuse (volume : 20 ml) - Butanol : 9 % (v/v) - Tampon acétate de sodium pH 5.5 : 50 mM - a-Transglucosidase d'Asperqillus niger : 100 U/ml - a-amylase de Bacillus 1 icheniformis : 5 U/ml - Amidon insoluble : 100 g/l Milieu à deux phases liquides (volume : 40 ml) Phase aqueuse (volume : 20 ml) - Butanol 9 9 % - Tampon acétate de sodium pH 5.5 : 50 mM - a-Transglucosidase d'AsDerqillus niger : 100 U/ml - a-amylase de Bacillus licheniformis : 5 U/ml - Amidon insoluble : 100 g/l Phase organique (volume : 20 ml) - Butanol saturé de tampon d'acétate de sodium 50 mM, pH 5.5 Ces milieux ont été analysés comme dans l'exemple 3. Les chromatogrammes obtenus sont présentés dans les figures 2 et 3. La concentration dra-butylglucoside est de 12 g/l (51 mM) dans le milieu à une phase liquide et de 7 g/L (30 mM) dans le milieu à deux phases liquides. L'a-Transglucosidase d'Asperqillus niger est tout à fait efficace pour la synthèse d'aalkylglucoside. REVENDICATIONS 1. Procédé de fabrication enzymatique d'aglucosides, caractérisé par la mise en contact d'au moins un alcool dont le(s) seul(s) groupement(s) fonctionnel (s) est (sont) un (des) groupement (s) hydroxyl, avec de l'amidon, des maltodextrines ou du maltose, en présence d'une préparation enzymatique purifiée présentant une activité d'atransglucosylation. 2. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que la préparation enzymatique est constituée d'une enzyme présentant une activité d'atransglucosylation ou de plusieurs enzymes telle que chacune ait une propriété d'a-transglucosylation ou telle que leurs activités enzymatiques mises en commun confèrent à la préparation enzymatique une activité d' a-transglucosylation. 3. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 ou 2 caractérisé en ce que le ou les enzymes sont des a-transglucosidases, de préférence provenant d'un champignon tel que Talaromyces duponti ou Aspergillus niger. 4. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 ou 3, caractérisé en ce que l'atransglucosidase est dépourvue d'activité p- glucos idase. 5. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 4 caractérisé en ce que l'amidon est sous forme d'amidon natif et en ce que l'action de la préparation enzymatique capable d'effectuer l'atransglucosylation est associée à l'action d'une hydrolase telle qu'une endo-amylase, par exemple l'aamylase. 6. Procédé selon la revendication 5, caractérisé en ce que les deux réactions enzymatiques se déroulent simultanément par exemple, par l'utilisation simultanée d'une endo-amylase et d'une atransglucosidase. 7. Procédé selon la revendication 5 ou 6 caractérisé en ce que l'amidon natif provient de céréales telles que le blé, le maïs, l'orge, l'avoine, le riz, le seigle, le sarrasin, le sorgho et le triticale, ou de tubercules telles que la pomme de terre ou le manioc, ou de légumineuses telles que les pois ou les féveroles, ou de toute autre plante. 8. Procédé selon la revendication 7 caractérisé en ce que les céréales sont sous forme de grains entiers, ou de fractions de grains, résultant par exemple d'un traitement enzymatique, chimique, thermique ou mécanique du grain, ou encore de tout produit issu du broyage du grain tel que la farine ou la semoule. 9. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 4 caractérisé en ce que l'amidon est sous forme d'amidon soluble, résultant par exemple d'une préhydrolyse acide ou enzymatique. 10. Procédé selon l'une quelconque des revendications précédentes caractérisé en ce que l'alcool est un alcanol, un alcool éthylénique, un alcool acétylénique, un alcool cyclique ou un phénol. 11. Procédé selon la revendication 10 caractérisé en ce que l'alcool est un alcool simple ou un polyol, de préférence un diol. 12. Procédé selon l'une quelconque des revendications 10 ou 11 caractérisé en ce que l'alcool possède de 1 à 6 atomes de carbone, est au moins partiellement soluble dans l'eau et présente, de préférence, une solubilité d'au moins 2,7 % (v/v) à 20"C. 13. Procédé selon l'une quelconque des revendications 10 à 12 caractérisé en ce que l'alcool est choisi parmi le groupe suivant : iso-propanol, nbutanol, iso-butanol, tert-butanol, iso-pentanol, hexane-diol, butène-l-ol-3, butyne-1-ol-3... ou un mélange d'au moins deux de ces alcools. 14. Procédé selon la revendication 10 caractérisé en ce que l'alcool est un alcanol possédant de 1 à 5, et en particulier 4, atomes de carbone, le produit du procédé étant alors un a-alkylglucoside, en particulier l'a-butylglucoside. 15. Procédé selon la revendication 10 caractérisé en ce que l'alcool est un alcool aliphatique primaire, par exemple, un alcool gras ayant entre 12 et 18 atomes de carbone. 16. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 15 caractérisé en ce qu'il est effectué entre 20 et 70"C, de préférence entre 20"C et 50"C, et à pH compris entre 3 et 7, de préférence entre 4 et 6. 17. a-Glucosides tels que produits selon le procédé de l'une quelconque des revendications 1 à 16. 18. a-Butylglucoside tel que produit selon le procédé de l'une quelconque des revendications 1 à 16. 19. Utilisation des a-glucosides selon la revendication 17 ou 18 comme surfactants, détergents, agents émulsifiants dans l'industrie cosmétique, pharmaceutique ou agro-alimentaire ou bien comme additifs dans l'industrie des plastiques, caoutchoucs et PVC, par exemple en tant qu'assouplissants. 20. Utilisation des a-glucosides selon la revendication 17 ou 18, par exemple les aalkylglucosides, dont la chaîne alkyle possède jusqu'à 6 atomes de carbone, comme matières premières dans la fabrication d'agents tensioactifs, par exemple par estérification ou par transglucosidation, ou comme polyols dans la fabrication de polyétherpolyols, polyesters ou résines alkydes. 21. Procédé de traitement de l'amidon natif, de farines de céréales ou de maltodextrines, caractérisé par la mise en contact de ces substrats avec un alcool dont le(s) seul(s) groupe(s) fonctionnel(s) est(sont) un(des) groupe(s) hydroxyl, en présence d'une préparation enzymatique purifiée ayant une activité d'a-tranglucosylation.