Brevet FR2684385A1 — publié le 19930604

La présente invention a pour objet de nouveaux héparosanes-N,O- sulfatés de haute masse moléculaire, les compositions d'héparosanes-N,O- sulfatés contenant ces nouveaux héparosanes-N,O-sulfatés, et les compositions pharmaceutiques ayant comme principe actif les nouveaux héparosanes-N,O-sulfatés de haute masse moléculaire. Il est connu que les glycosaminoglycanes sont des produits susceptibles d'être obtenus par extraction des tissus animaux Certains de ces glycosaminoglycanes possèdent des propriétés anticoagulantes et antithrombotiques très intéressantes Des produits typiques de cette famille sont l'héparine, ses fragments et leurs dérivés, ainsi que l'héparane-sulfate et le dermatane-sulfate, qui ont cependant le désavantage, dû à leur origine, d'être très coûteux. En particulier, il est connu que le dermatane-sulfate est une famille de polymères de degré de polymérisation variable, formées d'unités répétées constituées d'un groupe acide uronique (iduronyle ou glucuronyle) et d'un groupe acétylsulfo-4-galactosaminyle (H W Stuhlsatz "The Methodology of Connective Tissue Research", ( 1976), 137-146) Le dermatane-sulfate naturel a une masse moléculaire comprise entre 2 104 et 4 104 Da Ce produit est particulièrement intéressant comme anticoagulant et antithrombotique (F Fernandez et ai, British Journal of Haematology, ( 1986), 64, 309317). Il est d'autre part connu (I Bjôrk et U Lindahl, "Molecular and Cellular Biochemistry", ( 1982), Dr W Junk Publishers Pays-Bas) que la coagulation sanguine est un phénomène physiologique complexe, dont le mécanisme peut être schématisé et résumé de la façon suivante: Activation de contact Facteur X Ii I Facteur Xlla Facteur Xi Facteur Xia Facteur IX Facteur I Xa* Facteur tissulaire Vila Facteur X >l Facteur Xa* facteur de coagulation donné. Quelle que soit la nature du stimulus, les étapes finales sont identiques: le facteur Xa active le facteur Il (également appelé prothrombine), lequel sous sa forme activée (facteur Ila également appelé thrombine) provoque la protéolyse partielle du fibrinogène soluble avec libération de la fibrine insoluble, constituant principal du caillot sanguin. Dans les conditions physiologiques normales, des protéines régulatrices telles que l'antithrombine Ili (ATIII) et le cofacteur Il de l'héparine (HCII), sont également présentes dans le plasma. L'antithrombine III exerce une activité inhibitrice sur l'ensemble des facteurs de coagulation repérés par un astérisque (*) dans le schéma cidessus Cette inhibition est amplifiée de façon très forte en présence d'héparine ou d'oligosaccharides de synthèse de type héparinique (D H Atha et ai, Biochemistry, ( 1985), 24, 6723-6729). Le cofacteur Il de l'héparine n'exerce une activité inhibitrice que sur le facteur lia (thrombine), lequel catalyse la dernière étape de la coagulation. Cette activité est amplifiée de façon importante en présence d'héparine ou de dermatane-sulfate (D M Tollefsen, J Biol Chem, ( 1983), 258, 6713- 6716). L'inhibition du facteur Xa ou du facteur l Ia constitue un moyen privilégié pour obtenir une activité anticoagulante et antithrombotique puisque ces deux facteurs interviennent dans les deux dernières étapes de la coagulation, lesquelles sont indépendantes du stimulus déclencheur. Pour obtenir l'inhibition du facteur lia seul, une possibilité particulièrement intéressante consiste à mettre à profit la spécificité du cofacteur il de l'héparine et à rechercher l'amplification de son activité inhibitrice Le dermatane-sulfate est le produit connu possédant l'activité amplificatrice de ce type la plus puissante. Il est également connu que la constitution de la chaîne héparinique principale se fait en deux étapes Dans un premier temps, I'héparine est biosynthétisée à partir d'un protéoglycane précurseur, dont la partie polysaccharidique est constituée par une famille de polymères de degré de polymérisation variable formés d'unités répétées 13-D-glucuronyl-1,4 N- acétyl-D-glucosaminyl-( 1,4), (unités disaccharidiques) Cette partie polysaccharidique est habituellement appelée N-acétylhéparosane (J Navia, Anal Biochem, ( 1983), 135, 134-140) Cette première étape de biosynthèse est le seul moment o l'on peut vraiment parler d'un "motif disaccharidique" car la seconde étape de la biosynthèse va modifier ce squelette simple d'une manière profonde ("L'héparine, fabrication, structure, propriétés, analyses", J.P Duclos, ( 1984) pp 81-83, Masson Ed France). En effet, I'héparine naturelle, résultat de la biosynthèse, est un polysaccharide constitué par des molécules d'acide glucuronique et d'acide iduronique (acides uroniques), éventuellement sulfaté en position 2, associé à des molécules de glucosamine, éventuellement sulfatée en position 6 et sulfatée ou acétylée sur l'amine en position 2. Il est aussi connu que certaines bactéries de l'espèce Escherichia coli produisent un polysaccharide capsulaire, habituellement appelé antigène K 5, qui est une famille de polymères constituée d'unités répétées 13-Dglucuronyl- 1,4--N-acétyl-D-glucosaminyl-( 1,4), (W F Vann et al, Eur J Biochem, ( 1981), 116, 359-364). Ce polysaccharide, de même nature chimique que la partie polysaccharidique du protéoglycane précurseur de l'héparine, sera appelé ici N-acétylhéparosane Ce produit possède une masse moléculaire comprise entre 105 et 2,0 106 Da, et au niveau des unités "acide uronique", une structure très régulière composée uniquement d'acide D- glucuronique (W F Vann et al, Eur J Biochem, ( 1981),116,359-364, et demande de brevet EP-A-0 333 243). La demande de brevet EP-A-0 333 243 décrit le polysaccharide K 5 Osulfaté ainsi que certains de ses fragments composés respectivement de 4, 6 ou 8 unités "sucres", également O-sulfatés Ces produits ont une activité antiangiogénique et antitumorale, avec un rapport favorable de ces activités par rapport aux propriétés anticoagulantes Ce document décrit également des fragments de N-acétylhéparosane composés respectivement de 4, 6, 8 ou unités "sucres". La demande de brevet EP-A-0 333 243 décrit aussi la préparation d'un pentasaccharide ayant la structure N-acétylhéparosane-O-sulfaté, par synthèse chimique totale. Il est également connu que le polysaccharide K 5, N-désacétylé et N- sulfaté, peut-être utilisé comme substrat pour les enzymes qui catalysent les dernières réactions de modification du polymère, à savoir la hexuronosylC 5- épimérisation et la O-sulfatation dans la biosynthèse de l'héparine (M Kusche et al, Biochem J 1991, 275, 151-158) M Kusche et al décrivent la préparation du polysachcharide K 5 N-désacétylé-N-sulfaté par Ndésacétylation à l'aide de l'hydrazine/sulfate d'hydrazine et N-sulfatation par traitement du produit N- désacétylé avec le complexe triméthylamine-trioxyde de soufre. Il est enfin connu que par 5-épimérisation partielle et O-sulfatation du polysaccharide K 5 C 5-épimérisé, N-désacétylé et N-sulfaté, on obtient des produits qui ont une activité anti-Xa et une activité anti- la via HCII qui se situe entre celle typique de l'héparine de muqueuse et de l'héparane sulfate (B. Casu et ai, International Symposium on Heparin and related polysaccharides, UPPSALA, 2-6 septembre 1991, Abstract N 12) Tous ces produits, comme l'héparine, ont dans leurs chaînes aussi bien des structures glucuroniques que des structures iduroniques. On a maintenant trouvé que par O-sulfatation du polysaccharide K 5 N- désacétylé et N-sulfaté, on obtient un héparosane-N,O-sulfaté de haute masse moléculaire qui possède une bonne activité sur la coagulation, ladite activité se manifestant via héparine cofacteur Il et, ce qui est surprenant, via I'antithrombine III Plus particulièrement, on a trouvé de façon inattendue, que la 5-épimérisation partielle n'est pas nécessaire et que les héparosanesN,O- sulfatés, contenant dans leurs chaînes, à côté des unités de glucosamine, uniquement des unités glucuroniques, peuvent être utilisés comme principes actifs de médicaments anticoagulants et antithrombotiques. Les héparosanes-N,O-sulfatés de haute masse moléculaire, objet de la présente invention, se distinguent donc des autres produits déjà décrits dans la littérature, par leur structure originale, notamment caractérisée par un degré de sulfatation élevé (sulfatation aussi sur le groupe amine de la glucosamine), par l'absence d'acide iduronique et par leurs propriétés pharmacologiques inattendues Ils possèdent une activité anticoagulante vis à vis de l'héparine cofacteur Il (HCII) plus forte que celle du dermatanesulfate. En effet, leurs activités pharmacologiques sont cmparables à celles des glycosaminoglycanes couramment utilisés en thérapeutiques, notamment celles de l'héparine, et peuvent être utiles pour la régulation de la coagulation et peuvent plus particulièrement trouver leurs applications comme antithrombotiques. L'expression "de haute masse moléculaire" telle qu'utilisée dans la présente description pour le polysaccharide K 5 et pour ses dérivés N- désacétylés, N-désacétylés et N-sulfatés ainsi que pour les héparosanesN,O- sulfatés de la présente invention se réfère à une masse moléculaire supérieure à 1,5 104 Da, à savoir au delà de la limite dans laquelle ladite masse moléculaire est determinée avec une certaine précision selon les méthodes analytiques courantes Lorsque l'on se réfère au polysaccharide K 5 naturel et à ses dérivés, il est entendu que leur masse moléculaire est celle indiquée dans les références W F Vann et ai (Eur J Biochem, ( 1981), 116, 359-364) et EP-A-0 333 243 ci- dessus sauf si diversement spécifiés Toutefois, la même expression inclut également des produits ayant une masse moléculaire inférieure à celle du polysaccharide K 5 naturel, obtenus par fractionnement et/ou fragmentation et formés par des chaînes de masse moléculaire comprise entre 1,5 104 et 105 Da En définitive, I'expression "haute masse moléculaire" s'applique à tout produit de type polysaccharide K 5, y compris les fractions, éventuellement N-désacétylés et N-sulfaté ou à tout héparosane-N,O-sulfaté, y compris ses fractions, ayant une masse moléculaire comprise dans l'intervalle entre environ 1,5 104 et environ 4,0 106 Da. La présente invention a pour objet, des héparosanes-N,O-sulfatés constitués par des chaînes ou par un mélange de chaînes de masse moléculaire entre 1,5 104 et 4,0 106 Da, caractérisés par une structure disaccharidique répétée de formule 1: CH 20 OG COOH o o OG OG (I) NHE OG dans laquelle, E représente, dans O à 80 % des unités disaccharidiques desdits héparosanes-N,O-sulfatés, un groupe acétyle, et dans les unités disaccharidiques restantes, un groupe sulfate et éventuellement un atome d'hydrogène, G représente un atome d'hydrogène et un groupe sulfate, et les sels pharmaceutiquement acceptables desdits héparosanes- N,O-sulfatés. Le degré de sulfatation des héparosanes-N,O-sulfatés de haute masse moléculaire exprimé comme rapport sulfate/carboxyle, est de préférence de 1,5 à 3,0. L'invention concerne aussi une composition d'héparosane-N,O-sulfaté contenant au moins 70 % en masse d'un héparosane-N,O-sulfaté décrit ci-dessus et objet de la présente invention. Les héparosanes-N,O-sulfatés objet de la présente invention peuvent être constitués de chaînes polysaccharidiques identiques de masse moléculaire bien définie, cette masse moléculaire étant située dans l'intervalle 1,5 104 et 4,0 106 Da Ils peuvent aussi être constitués par un mélange de chaînes de masses moléculaires variables, ces masses moléculaires étant comprises entre 1,5 104 et 4,0 106 Da La dispersion des masses moléculaires de ces chaînes peut-être plus ou moins importante En effet, les héparosanes- N,O-sulfatés, objet de la présente invention peuvent être constitués par des chaînes ayant entres elles une différence de masse moléculaire d'au maximum environ 3,9 106 Da, ou au contraire, seulement par des chaînes ayant entre elles une différence de masse moléculaire d'environ 300 Da, ce qui correspond à une unité de structure uronique (acide D- glucuronique ou ses dérivés) ou de structure glucosamine ou même une différence de masse moléculaire inférieure à 300 Da dans le cas o les héparosanes-N,O-sulfatés résultent d'une fragmentation chimique Il est aussi évident qu'en fonction de la constitution de chaque héparosane-N,Osulfaté, la masse moléculaire des chaînes ayant, soit la masse moléculaire la plus faible, soit la masse moléculaire la plus haute, peut correspondre à n'importe quelle valeur comprise entre 1,5 104 et 4,0 106 Da. L'expression "G représente un atome d'hydrogène et un groupe sulfate" utilisée ci-dessus indique que G dans l'unité disaccharidique, représente pour certaines positions un atome d'hydrogène et dans les autres * restantes, un groupe sulfate De la même manière, E représente dans certaines unités disaccharidiques un groupe acétyle et dans le reste de ces unités, un groupe sulfate ou éventuellement un atome d'hydrogène Les unités disaccharidiques des héparosanes-N,O- sulfatés, ne sont donc pas toutes identiques. La formule I représente une structure répétitive disaccharidique formée par une unité glucosamine et une unité acide D-glucuronique Lesdites unités peuvent être inversées, plus particulièrement, si l'on considère que la structure disaccharidique de formule I est répétée N fois, que l'unité non-réductrice des chaînes peut-être indifféremment soit une unité glucosamine, telle que représentée dans la formule I avec un groupe hydroxy en position 4, cette unité de glucosamine étant sulfatée ou non, soit un acide D-glucuronique contenant éventuellement une double liaison en position C 4-C 5 et étant sulfaté ou non L'unité réductrice peut- être indifféremment soit un acide D-glucuronique, tel que représenté dans la formule 1, substitué avec un hydrogène sur l'oxygène anomérique, soit une glucosamine Les composés préférés de l'invention sont constitués de chaînes dont les extrémités réductice et non réductrice sont des unités uroniques sulfatées ou non, de la glucosamine sulfatée ou non ou de la N-acétylglucosamine sulfatée ou non. Comme dans le cas de l'héparine et sauf indication contraire, on entend par les termes "polysaccharide K 5 " et "héparosane-N,O-sulfaté" référés aux produits, les produits sous forme de sel de sodium. Selon un autre de ses aspects, la présente invention a pour objet un procédé de préparation d'héparosanes-N,O-sulfatés de haute masse moléculaire caractérisé en ce que: (i) soit on soumet un produit de départ constitué par un polysaccharide K 5 N- désacétylé, N-sulfaté, ou par une de ses fractions, à une O-sulfatation, (ii) soit on soumet un produit de départ constitué par un polysaccharide K 5 N- désacétylé, ou par une de ses fractions, à une N,O-sulfatation partielle suivie éventuellement d'une N-sulfatation totale, puis l'on isole le produit ainsi obtenu et on le transforme éventuellemnt en un sel pharmaceutiquement acceptable. On utilise comme produit de départ, des produits qui ont une masse moléculaire comprise dans l'intervalle d'environ 1,0 104 à environ 2,0 106 Da, pour préparer des héparosanes N,O-sulfatés ayant une masse moléculaire d'environ 4,0 106 Da La différence de masse indiquée entre les produits de départ et les héparosanes-N,O-sulfatés est due à la N,O-sulfatation. La présente invention a aussi plus particulièrement pour objet un procédé de préparation d'une composition contenant 70 % à 100 % d'un héparosane-N,O-sulfaté de haute masse moléculaire, objet de la présente g invention, caractérisé en ce qu'il comprend la séquence des étapes suivantes: étape a: culture d'une souche d'Escherichia coli (K 5), pour former un N-acétylhéparosane (polysaccharide K 5) de haute masse moléculaire,. étape b: isolement et purification du N-acétylhéparosane formé pour obtenir une composition contenant 70 % à 100 % d'un Nacétylhéparosane constitué par un mélange de chaînes de masse moléculaire entre 1,0 104 et 2,0 106 Da, caractérisées par une structure disaccharidique répétée de formule 11: CH 2 OH COOH (Il) OH étape c: désacétylation de cette composition de Nacétylhéparosane pour obtenir une composition contenant 70 % à 100 % d'un héparosane constitué par un mélange de chaînes de masse moléculaire entre 1,0 104 et 2,0 106 Da, caractérisées par une structure disaccharidique répétée de formule III CH 2 OH ( 111) NHR' OH dans laquelle R' représente, dans O à 80 % des unités disaccharidiques, un groupe acétyle, et dans les unités disaccharidiques restantes un atome d'hydrogène, étape d: -soit une N-sulfatation totale ou partielle pour obtenir une composition contenant 70 % à 100 % d'un héparosane N-sulfaté constitué par un mélange de chaînes de masse moléculaire entre 1,0 104 et 2,0 106 Da caractérisée par une strucuture disaccharidique répétée de formule IV: CH 2 OH COOH O O. OH 04 9 "OH (IV) NHE OH dans laquelle E représente dans O à 80 % des unités disaccharidiques un groupe acétyle et dans les unités disaccharidiques restantes un groupe sulfate et éventuellement un atome d'hydrogène, cette étape de Nsulfatation partielle ou totale étant suivie d'une étape de O- sulfatation partielle ou totale, soit une N,O-sulfatation partielle de cette composition d'héparosane, soit une N,O-sulfatation partielle de cette composition d'héparosane suivie d'une étape de N- sulfatation totale, et comporte éventuellement une ou plusieurs étapes de fractionnement des masses moléculaires effectuées à la fin des étapes a, b, c ou d. Comme produit de départ, on peut utiliser un polysaccharide K 5 N- désacétylé, N-sulfaté tel que celui décrit par M Kusche et al (Biochem J 1991, 275,151-158). Un autre produit de départ avantageux, est un polysaccharide K 5 tel que décrit dans EP-A-0 333 243. Un produit de départ particulièrement avantageux est un polysaccharide K 5 obtenu par culture d'Escherichia coli SEBR 3282 Cette souche est une souche dérivée de la souche Bi 8337-41 ( 010:K 5:H 4) ATCC 23506 (décrite notamment par D S Gupta et al FEMS Microbiology Letters, ( 1982), 14, 75-78 et W Vann Eur J Biochem, ( 1981), 116, 359-364). La souche Escherichia coli SEBR 3282 répond positivement au test de typage par le phage K 5 spécifique selon la méthode de B Kaiser et al (J Clin. Microbiol, ( 1984), 19, 2, 264-266) Il s'agit donc bien d'une souche Escherichia coli (K 5) Cette souche a été déposée auprès de la CNCM de l'lnstitut Pasteur, Paris, France, sous le N 1-1013 On peut aussi utiliser un mutant, soit spontané soit induit de cette souche, comme aussi d'autres souches d'Escherichia coli (K 5) appropriées par exemple la souche Bi 626-42 ( 012:K 5:NM) ATCC 23508. Pour la préparation d'un N-acétylhéparosane de haute masse moléculaire utilisé comme matière première pour l'hémisynthèse chimique des produits de l'invention, un mlieu de culture riche en glycérol est nécessaire. La culture de la souche d'Escherichia coll (K 5) est continuée de préférence au moins deux heures après l'arrêt de la croissance de la biomasse (environ 25-35 heures d'âge en fermenteur). A l'étape b, l'isolement et la purification du N-acétylhéparosane, pour obtenir une composition contenant 70 % à 100 % d'un N-acétylhéparosane constitué par un mélange de chaînes de masse moléculaire entre 1,0 104 et 2,0 106 Da, caractérisées par une structure disaccharidique répétée de formule Il, sont réalisés par un procédé comprenant au moins une étape de précipitation et une étape de chromatographie d'échange d'ions Cette dernière étape est réalisée en utilisant de préférence une colonne Q- Sepharose ou une colonne équivalente La précipitation est effectuée par un solvant organique approprié, et notamment un alcool, de préférence l'éthanol. Lors de ce procédé, le N-acétylhéparosane peut-être sous forme de sel, de préférence sous forme de sel de sodium. A titre d'exemple, on peut schématiser le procédé préféré d'isolement et de purification comme suit: étape ai: Précipitation par l'éthanol, étape b 1: Dialyse, étape ci: Précipitation par l'éthanol, puis déshydratation et séchage, étape d 1: Purification par chromatographie d'échange d'anions, étape e 1: Précipitation par l'éthanol de l'éluat, obtenu par l'étape d 1, déshydratation, séchage et broyage. Concernant les étapes ai, b 1, cl, l'ordre avec lequel elles sont effectuées importe peu Une des étapes a 1 ou ci peut être supprimée. A l'étape e 1, la précipitation par l'éthanol n'est pas indispensable Il est possible d'isoler le N-acétylhéparosane par d'autres méthodes comme par exemple par évaporation sous vide de l'éluat, obtenu par l'étape d 1. L'isolement et la purification du N-acétylhéparosane, pour obtenir une composition contenant 70 % à 100 % d'un N-acétylhéparosane constitué par un mélange de chaînes de masse moléculaire comprise entre 1,5 104 et 2,0 1 06 Da peut aussi être effectuée de la manière suivante: étape a'i: Dialyse, étape b'1: Purification en milieu acide, élimination des impuretés insolubles étape c'1 étape d'1 étape e'i étape f'j dans des solutions aqueuses de p H 3,5 et p H 1,8, : Précipitation par l'éthanol, puis déshydratation et séchage, : Hydrolyse alcaline et dialyse, : Purification par chromatographie d'échange d'anions, : Purification par chromatographie d'exclusion. Ce procédé d'isolement et de purification est aussi un procédé préféré de l'invention. L'hydrolyse alcaline est effectuée avec une solution de Na OH, à une température comprise entre 30-80 C. En appliquant les procédés d'isolement et de purification, on peut utiliser comme produit de départ, soit la suspension obtenue à la fin de la culture et dans ce cas une filtration préalable est nécessaire, soit un produit qui est déjà soumis à une purification préliminaire effectuée selon un procédé qui comporte les étapes suivantes: étape a" 1 étape b" 1 étape c" 1 étape d" étape e" 1 : Centrifugation de la suspension obtenue à la fin de la culture, : Mise en contact du surnageant avec une solution alcaline, : Préfiltration, : Concentration sur membrane de seuil de coupure déterminé, : Dialyse. L'étape e"î n'est pas indispensable. Comme solution alcaline, on peut utiliser une solution de Na OH. De manière préférentielle, on procède à une purification préliminaire du produit obtenu à la fin de la culture, selon la méthode décrite cidessus. Les deux extrémités réductrice et non-réductrice des N-acétylhéparosanes de formule Il tels qu'obtenus selon le procédé décrit ci- dessus et en utilisant la souche d'Escherichia coll SEBR 3282 ou une autre souche appropriée comme indiqué précédemment, sont des unités uroniques ou de la N-acétylglucosamine. Dans la majorité des chaînes, l'extrémité non-réductrice est une unité uronique de formule (a): COOH I HOH O (a) OH L'enrichissement éventuel de la composition obtenue en N- acétylhéparosane, constituée par un mélange de chaînes de masse moléculaire entre 1,5 104 et 2,0 106 Da, ayant une structure disaccharidique répétée de formule Il, peut-être effectué à des degrés divers et notamment jusqu'à l'isolement dudit N-acétylhéparosane L'enrichissement est réalisé par la mise en oeuvre de techniques classiques de fractionnement des masses moléculaires telles que la chromatographie de perméation de gel et l'ultrafiltration (A A Horner, Biochem J, ( 1989), 262, 953-958; G Pyler et ai, J. Biol Chem ( 1988), 263, 11, 5197-5201 et U Lindahl et ai, J Biol Chem, ( 1984), 259, 20, 12368-12376) On peut aussi utiliser la méthode de fractionnement éthanolique (Demande de Brevet EP-A-0 287 477) Cette dernière méthode de fractionnement est particulièrement appréciée parmi d'autres méthodes envisageables. A l'étape c, la désacétylation partielle des compositions contenant 70 % à 100 % de N-acétylhéparosane, qui conduit à l'obtention des compositions contenant 70 % à 100 % d'un héparosane de haute masse moléculaire constitué par un mélange de chaînes de masse moléculaire entre 1,0 104 et 2,0 106 Da, caractérisées par une structure disaccharidique répétée de formule III, indiquée ci-dessus, est réalisée par un traitement avec un agent désacétylant. Comme agents désacétylants on peut mentionner le pentasulfure de phosphore, le fluoroborate de triéthyloxonium, la soude ou I'hydrazine, ces deux derniers agents étant particulièrement appréciés On peut aussi utiliser les acides minéraux forts, tels que l'acide chlorhydrique, I'acide sulfurique etc La durée de la réaction dépend des conditions opératoires choisies et notamment de la température et de la concentration de l'agent désacétylant dans le milieu réactionnel. L'enrichissement de la composition de l'héparosane en héparosane constitué d'un mélange de chaînes de masse moléculaire comprise entre 1, 0 104 et 2,0 106 Da, caractérisées par une structure disaccharidique répétée de formule III, est réalisé par la mise en oeuvre de techniques classiques de fractionnement des masses moléculaires mentionnées ci-dessus (chromatographie de gel perméation, ultrafiltration et fractionnement par des solvants organiques miscibles à l'eau et notamment fractionnement éthanolique) Dans ce cas, il est possible d'obtenir des compositions contenant 90 % à 100 % en masse d'un héparosane constitué par un mélange de masse moléculaire entre -1,0 104 et 2,0 106 Da, ayant la structure disaccharidique répétée de formule III. Selon la première variante de l'étape d (N-sulfatation partielle ou totale suivie d'une O-sulfatation partielle ou totale), la N-sulfatation est effectuée selon des méthodes connues (M Kusche et ai, Biochem J ( 1991) 275, 151- 158) Plus précisemment, la N-sulfatation est réalisée à l'aide d'un complexe de trioxyde de soufre avec une base organique telle que la triméthylamine, la triéthylamine ou la pyridine Elle peut aussi être effectuée par l'acide chlorosulfonique en solution dans la pyridine On utilise avantageusement le complexe trioxyde de soufre (SO 3) avec la triméthylamine, et la réaction de la N-sulfatation est réalisée à une température comprise entre 20-80 C en milieu aqueux alcalin A la fin de la réaction de N-sulfatation, le produit ainsi obtenu est précipité par addition d'une quantité adéquate d'éthanol Le précipité formé est repris avec de l'eau ultra-purifiée, dialysé contre celle-ci, lyophiiisé et séché Ce processus de purification est donné à titre d'exemple et n'exclut pasdes procédés équivalents Les étapes de purification peuvent être répétées plusieurs fois. Par la suite, et selon le procédé de l'invention, avant l'étape de la Osulfatation, I'héparosane N-sulfaté est transformé de préférence en un sel de base organique ou en un sel d'ammonium quaternaire Pour la formation du sel d'ammonium quaternaire on utilise de manière préférentielle, le tetrabutylammonium. La réaction de O-sulfatation est réalisée dans le formamide ou un autre solvant, chimiquement équivalent, à l'aide par exemple d'un complexe de trioxyde de soufre avec une base organique telle que la triméthylamine, la triéthylamine ou la pyridine On utilise de préférence un complexe trioxyde de soufre- pyridine La réaction de O-sulfatation est en général effectuée à une température comprise entre 10 C et 50 C. L'héparosane-N,O-sulfaté est ensuite précipité par addition dans le milieu réactionnel de chlorure de sodium jusqu'à obtention d'une solution de 0,3 M à 0,5 M en Na CI, puis, d'une quantité adéquate d'éthanol On procède ensuite à une purification de la composition de l'héparosane-N,O-sulfaté de la manière suivante: on reprend le précipité avec une solution de Na CI 0,3 M à 0,5 M, on reprécipite avec de l'éthanol, le précipité formé est isolé, repris avec de l'eau ultra- purifiée, dialysée contre celle-ci et éventuellement lyophilisé et séché. Le processus de la purification ci-dessus mentionné est donné à titre d'exemple et n'exclut pas des procédés équivalents La purification peut être effectuée une ou plusieurs fois. L'enrichissement de la composition de l'héparosane-N,O-sulfaté en héparosane-N,O-sulfaté de masse moléculaire désirée, est réalisé par la mise en oeuvre des techniques classiques de fractionnement des masses moléculaires, déjà mentionnées Il est intéressant d'effectuer cet enrichissement. Selon la deuxième et la troisième variante de l'étape d du procédé (N,O-sulfatation partielle de la composition d'héparosane ou N,O-sulfatation partielle suivie d'une étape de N-sulfatation totale), avant l'étape de la N,O-sulfatation partielle, les héparosanes peuvent être transformés en un sel de base organique ou en un sel d'ammonium quaternaire Pour la formation du sel d'ammonium quaternaire des héparosanes, on utilise de manière préférentielle le tétrabutylammonium. L'étape de la N,O-sulfatation partielle réalisée selon le procédé décrit dans le brevet français Na 2 584 728 du 10 11 87 (correspondant à la demande FR-85 10787), est effectuée dans un solvant aprotique polaire, tel que le diméthylformamide, le diméthylsulfoxyde, I'hexaméthylphosphoramide ou I'acétonitrile ou un mélange de ces solvants, à l'aide par exemple d'un complexe de trioxyde de soufre avec une base organique, telle que la triméthylamine, la triéthylamine ou la pyridine Elle peut aussi être effectuée par l'acide chlorosulfonique en solution dans la pyridine On utilise de préférence le complexe trioxyde de soufre-pyridine. Il est aussi possible d'utiliser d'autres agents de sulfatation, notamment ceux qui sont rapportés par E E Gilbert dans Chemical Review, ( 1962), 62, 549-589 La réaction de N,O-sulfatation est en général effectuée à une température comprise entre O O et 100 C, de préférence entre 10 et 50 C, pendant une durée comprise entre 6 h et 14 h. Lors du procédé de la préparation, à la fin de la réaction de N,O-sulfatation partielle, la composition de l'héparosane-N,O-sulfaté contenant % à 100 % d'un héparosane-N,0-sulfaté objet de la présente invention, est précipitée par addition de chlorure de sodium jusqu'à obtention d'une solution de 0,3 M à 0,5 M M en chlorure de sodium, puis d'une quantité adéquate d'éthanol Le précipité formé est repris dans une solution de chlorure de sodium 0,3 M à 0,5 M Cette solution est ensuite neutralisée Après addition d'une quantité adéquate d'éthanol, le précipité formé est isolé, repris avec de l'eau ultra-purifiée, dialysé contre celle-ci, lyophilisé et séché. L'étape de la N,O-sulfatation, ainsi que les étapes de purification de la composition de l'héparosane-N,O-sulfaté décrites dans le paragraphe précédent, peuvent être répétées une ou plusieurs fois Ici aussi, le processus de la purification est donné à titre d'exemple et n'exclut pas des procédés équivalents. Cette étape de N,O- sulfatation est de préférence suivie d'une étape de N-sulfatation totale, réalisée en général dans un solvant aqueux, avantageusement de p H basique, avec un agent de sulfatation, tel qu'un complexe trioxyde de soufre avec une base organique, par exemple la triméthylamine, selon la technique de N-sulfatation mentionnée ci-dessus. A la fin de l'étape de N-sulfatation totale, la composition de l'héparosane-N,O-sulfaté est précipitée après addition de chlorure de sodium, jusqu'à l'obtention d'une solution de 0,3 M à 0,5 M en chlorure de sodium, et d'éthanol Le précipité formé est ensuite remis en solution dans une solution de chlorure de sodium 0,3 M à 0,5 M, reprécipité par l'éthanol, puis repris dans l'eau ultra-purifiée, dialysé contre celle-ci, lyophilisé et séché Comme il a déjà été mentionné, il est interessant d'effectuer un enrichissement de la composition de l'héparosane-N,O-sulfaté en héparosane-N,O-sulfaté Ceci est réalisé par la mise en oeuvre des techniques classiques de fractionnement des masses moléculaires. Les héparosanes-N,O-sulfatés, objet de la présente invention et les compositions d'héparosane-N,O-sulfaté contenant au moins 70 % d'un nouvel héparosane-N,O-sulfaté, objet de la présente invention, sont avantageusement obtenus par un procédé comportant soit une réaction finale de N-sulfatation soit par un procédé comportant d'abord une N- sulfatation suivie d'une O-sulfatation partielle ou totale E représente alors pour les structures répétées dans la formule (I), lé groupe acétyle et le groupe sulfate. On apprécie que l'héparosane-N,O-sulfaté contienne moins de 0,2 pmole/mg de groupe amino libre (NH 2). Le groupe acétyle des unités disaccharidiques est de préférence présent à un taux inférieur ou égal à 60 % et on apprécie que le degré de sulfatation, exprimé comme le rapport sulfate/carboxyle soit compris entre 1,5 et 3,0. Les produits préférés de l'invention sont les héparosanes-N,O-sulfatés constitués par au moins 70 % en masse de chaînes de masse moléculaire entre 1,0 105 et 5,0 105 Da, comme aussi les héparosanes-N,O-sulfatés constitués d'au moins 70 % en masse, de chaînes de masse moléculaire comprises entre 2,5 104 et 2,5 105 Da. Comme autres produits préférés de l'invention, on peut citer les héparosanes-N,O-sulfatés constitués d'au moins 70 % en masse de chaînes de masse moléculaire entre 2,0 104 et 105 Da. Le procédé d'obtention des héparosanes-N,O-sulfatés décrit ci- dessus ainsi que les méthodes de purifications permettent l'obtention des héparosanes-N,O-sulfatés sous forme de sel de sodium A partir de ces sels, on peut obtenir en appliquant les méthodes utilisées pour préparer les différents sels d'héparine ou d'héparine non salifiée ("L'héparine, fabrication, structure, propriétés, analyses", J P Duclos, ( 1984) pp 81-83, Masson Ed - France) soit d'autres sels d'héparosanes-N,O-sulfatés, soit des héparosanes- N,O-sulfatés non salifiés Comme sels des héparosanes-N,O-sulfatés on entend tous les sels pharmaceutiquement acceptables Ces sels sont obtenus par des méthodes classiques décrites notamment pour la préparation des sels de l'héparine (Brevet US 4 168 377). Les héparosanes-N,O-sulfatés, objet de la présente invention possèdent des propriétés pharmacologiques et biochimiques intéressantes et tout à fait surprenantes par rapport aux enseignements de l'art antérieur. Notamment, contrairement aux produits sulfatés de l'antigène K 5 décrits dans le brevet EP-A-0 333 243, qui ont une activité antiangiogénique et antitumorale, avec un rapport favorable de ces activités par rapport aux propriétés anticoagulantes, les héparosanes-N,O-sulfatés de la présente invention possèdent une bonne activité régulatrice de la coagulation Cette activité est très supérieure à celle du dermatane-sulfate sur les différents paramètres de la coagulation, et elle peut plutôt être comparée à celle de l'héparine. Plus particulièrement, I'activité anti-l Ia, ATIII ou HCII dépendante, de produits représentatifs de l'invention ont été déterminées selon les méthodes décrites par D Dupouy et ai dans Thrombosis and Haemostasis, ( 1988), 60, 2, 236-239, pour le cofacteur Il de l'héparine (HCII) et par M L Larsen et ai dans Thrombosis Research, ( 1978),13, 2,285-288 pour l'antithrombine (ATIII). Dans les deux cas, le test consiste à mesurer in vitro l'effet inhibiteur du produit étudié sur la thrombine purifiée (facteur lia) en présence d'HCII ou ATIII purifiés dans le dosage de l'activité amidolytique de la thrombine, vis-à-vis d'un substrat chromogène Comme il possède l'activité anti lla HCII dépendante la plus forte, comme le dermatane-sulfate, préparé selon la méthode décrite par H W Stuhlsatz et ai dans "The Methodology of Connective Tissue Research" ( 1976) 137-146, il est utilisé comme produit de référence dans le test de mesure de cette activité, le résultat étant exprimé en mg de dermatane- sulfate (DS) équivalents en activité à 1 mg du produit étudié (mg DS équiv/mg). L'activité anti-Xa (titre Yin-Wessler) desdits produits représentatifs de l'invention a été mesurée par la méthode décrite par E T Yin et al dans J Lab. Clin Med ( 1973), 81, 2, 298-310, tandis-que leur activité anticoagulante globale a été mesurée selon le test APTT décrit par R R Proctor et ai dans Am. J Clin Path ( 1961), 36, 212-219. Tous les produits testés ont montré une activité anti-Ila HCII dépendante nettement supérieure à celle du dermatane-sulfate L'activité anti-lia ATIII dépendante et le titre de Yin-Wessler, bien qu'inférieurs à ceux des héparines, se sont montrés supérieurs à ceux du dermatane- sulfate Leur titre en APTT est d'environ 2 à environ 15 fois supérieur à celui du dermatane-sulfate, et peut atteindre 40 % de celle de l'héparine. Les héparosanes-NO-sulfatés de l'invention présentent donc une spécificité d'action et une activité anticoagulante particulièrement intéressantes. Les héparosanes-N,O-sulfatés de la présente invention sont très peu toxiques; leur toxicité est parfaitement compatible avec leur utilisation comme médicaments. L'invention s'étend donc aussi aux compositions pharmaceutiques renfermant comme principe actif un héparosane-N,O-sulfaté, objet de la présente invention, un de ses sels, ou une composition d'héparosane N,O- sulfaté contenant au moins 70 % de cet héparosane-NO-sulfaté ou l'un de ses sels, en association avec un ou plusieurs véhicules pharmaceutiques appropriés. Ces compositions pharmaceutiques sont utiles notamment pour le traitement, à titre préventif ou curatif, des troubles de la paroi vasculaire tels que l'athérosclérose et l'artériosclérose et des états d'hypercoagulabilité observés par exemple à la suite d'opérations chirurgicales, de développements tumoraux ou de dérèglements de la coagulation induits par des activateurs enzymatiques, bactériens ou viraux. La posologie peut largement varier en fonction de l'âge, du poids et de l'état de santé du patient, de la nature et de la sévérité de l'affection ainsi que de la voie d'administration. Cette posologie comprend l'administration d'une ou plusieurs doses d'environ 1 mg à 1 g par jour, de préférence d'environ 5 mg à 500 mg par jour par exemple de l'ordre de 200 mg par jour par voie intraveineuse, ou par voie sous-cutanée, en administrations discontinues ou à intervalles réguliers, ou d'une dose journalière de l'ordre de 200 mg à 1000 mg par jour par voie orale. Ces doses peuvent être naturellement ajustées pour chaque patient en fonction des résultats observés et des analyses de sang effectuées auparavant. Les N-acétylhéparosanes (composés de formule 11), les héparosanes (composés de formule III) et les héparosanes N-sulfatés (composés de formule IV) issus respectivement des étapes b, c et d dans la préparation des produits de départ du procédé de la présente invention, les héparosanesN,O- sulfatés objet de la présente invention, ainsi que les fractions de tous ces produits, constituent des intermédiaires de haute masse moléculaire utiles pour la préparation des N-acétylhéparosanes, héparosanes-Nsulfatés et des héparosanes-N,O-sulfatés de faible masse moléculaire par dépolymérisation. La dépolymérisation peut-être effectuée selon les méthodes décrites dans la littérature pour préparer les héparines de bas poids moléculaire, par exemple, par dépolymérisation au periodate, par des radicaux libres, par betâ- élimination ou par action de l'acide nitreux (demandes de brevets ou brevets EP-0 040 144, EP-0 037 319, EP-0 121 067) Ces méthodes sont données à titre d'exemples et ne sont pas limitatives On peut utiliser toute autre méthode de dépolymérisation de glycosaminoglycanes Par la suite, les produits de dépolymérisation peuvent être soumis à un ou plusieurs fractionnements afin d'obtenir des N-acétylhéparosanes, des héparosanes-N-sulfatés et des héparosanes-N,O-sulfatés constitués de chaînes de faible masse moléculaire. L'invention est illustrée par les exemples ci-après. PREPARATIONS PREPARATION I Préparation d'un N-acétylhéparosane de haute masse moléculaire (Procédé I) 1) Culture de la souche bactérienne Escherichia coli (K 5) et séparation d'un filtrat contenant du N-acétylhéparosane On ensemence 400 ml du milieu B, de composition précisée dans le tableau I ci-après, avec la souche Escherichia coli SEBR 3282 (déposée auprès de la CNCM de l'Institut Pasteur, Paris France, sous le N 1-1013) et on incube sous agitation pendant 2 h à 37 C. La préculture obtenue est alors transférée dans un fermenteur de 18,5 I contenant 11 I du milieu A, de composition précisée dans le tableau I ciaprès et on incube pendant 6 h 30 min à 37 C et p H égal à 7,2, la pression partielle en oxygène étant maintenue à 40 mm Hg par régulation de l'injection d'air (jusqu'à 20 I/min) et de l'agitation On ajoute alors du glycérol en introduisant de façon continue une solution stérile contenant 500 g/I de glycérol à raison de 18 g/h pendant 16-17 h. On poursuit la culture dans les mêmes conditions de température, de p H et de pression partielle en oxygène jusqu'à consommation quasi totale du glycérol Le suivi de la DO (ô = 600 nm) du milieu de la suspension de culture après la fin de l'ajout en glycérol, montre un état stationnaire ou de lyse légère jusqu'à l'arrêt de la culture à 28-30 h d'âge en fermenteur. On refroidit alors le bouillon de culture à 25 C puis on le filtre à travers une membrane de porosité 0,22 pm On obtient ainsi environ 12 I de filtrat contenant du N-acétylhéparosane. TABLEAU I Composition et préparation du milieu A et du milieu B. MILIEU A Dans 900 mi d'eau ultra-purifiée dissoudre dans l'ordre: NTA (acide nitrilotriacétique) 1000 mg K 2 HPO 4 790 mg Acide glutamique 11000 mg Mg CI 2,6 H 20 500 mg K 2 SO 4 450 mg Fe SO 4,7 H 20 18 mg Ca CI 2,2 H 20 2 mg Na CI 500 mg KCI 5000 mg Solution d'oligo-éléments (cf Tableau II) 1 ml Glycérol 10000 mg Ajuster le p H à 7,2 avec de la potasse concentrée de densité 1,38 et compléter à 1000 ml avec de l'eau ultra-purifiée Effectuer une filtration stérilisante sur membrane de 0,2 mm. Solution de glycérol Dissoudre 50 g de glycérol dans une quantité adéquate d'eau ultra-purifiée et ajuster le volume à 1000 ml avec le même solvant Effectuer une filtration stérilisante sur membrane de 0,2 mm. L'anti-mousse employé en cours de fermentation est le Struktol J 673 (Schill et Seilacher ). MILIEU B La préparation du milieu B est identique à celle du milieu A, à la différence près, qu'il convient d'ajouter en plus le tampon (p H7,2) acide 3-morpholinopropanesulfonique après addition de l'agent antimousse. TABLEAU Il Préparation de la solution d'oligo-éléments utilisée dans la préparation du milieu A et du milieu B dans 800 mi d'eau ultra-purifiée dissoudre (dans l'ordre): H 3 BO 3 500 mg Na 2 Mo O 4,2 H 20 1930 mg Co Cl 2,6 H 20 11850 mg Cu SO 4,5 H 20 25 mg Zn SO 4,7 H 20 2000 mg AICI 3,6 H 20 2410 mg Ajouter 100 ml d'acide chlorhydrique de densité 1,19 et compléter à 1000 mi avec de l'eau ultra-purifiée. 2) Isolement et purification d'un N-acétylhéparosane majoritairement de haute masse moléculaire: Etape a Précipitation éthanolique: On ajoute au filtrat environ 48 I d'éthanol à 95 % (v/v) et on laisse le mélange précipiter et décanter à 4 C pendant 8 h On élimine le surnageant par pompage, puis centrifugation, et on reprend le culot de centrifugation dans environ 1 I d'eau ultra-purifiée. Etape b Dialyse: On dialyse pendant 24 h la solution obtenue à l'étape précédente placée dans un boudin NOJAX 40 composé d'une membrane à base de cellulose et de porosité 24 À, contre de l'eau ultra-purifiée ( 1 volume de solution/ 6 volumes d'eau, renouvelés après 2 h, 8 h et 16 h) Cette opération * permet d'éliminer les petites molécules présentes dans le milieu de culture, tels que sels, sucres, acides aminés, oligonucléotides et oligopeptides. Etape c Précipitation, déshydratation et séchage: On ajoute à 1 volume de la solution dialysée, 0,5 M de Na CI et 4 volumes d'éthanol On laisse se former le précipité pendant 5 min à température ambiante On centrifuge à 5000 g pendant 20 min On reprend les culots de centrifugation dans l'éthanol, on agite la suspension obtenue, et on la laisse reposer pendant 1 h à température ambiante On répète les opérations de centrifugation et de mise en suspension On centrifuge à nouveau à 5000 g pendant 20 min On sèche les culots de centrifugation obtenus dans une étuve sous vide à 40 C pendant 24 h. Etape d Broyage en poudre: Les culots de centrifugation secs sont broyés à l'aide d'un mortier dans des conditions anhydres. Etape e Chromatographie d'échange d'anions: On reprend les culots de centrifugation broyés, dans un tampon appelé tampon D, de composition Tris-HCI 20 m M p H 7,5, à raison de ml/g. La solution obtenue est chromatographiée sur une colonne d'échange d'anions forts comportant une matrice d'agarose réticulée avec des groupes ammonium quaternaires (le "Q-Sepharose fast flow" de Pharmacia ) préalablement équilibré avec le tampon D, à raison de 50 ml de gel pour 1 g de poudre. On lave le gel avec une quantité suffisante de tampon D pour le retour à la ligne de base de la détection UV à 214 nm, puis avec une solution de pipérazine 25 m M dont le p H a été ajusté à 3,5. On élue avec une solution de p H 3,5 ayant une composition: Na CI 0,5 M et pipérazine 25 m M L'éluat est neutralisé à l'aide d'une solution de Na OH 5 N. Etape f Précipitation, déshydratation, séchage et broyage: On répète les opérations décrites dans les étapes c et d ci- dessus, sans ajout de chlorure de sodium. Le N-acétylhéparosane obtenu à l'issue de l'étape f, est appelé lot A. 3) Caractérisation du N-acétylhéparosane obtenu à l'issue des différentes étapes de purification: Spectre de résonance magnétique nucléaire (RMN) Les spectres RMN du proton et du carbone 13 C sont comparés à ceux du N-acétylhéparosane décrit par W F Vann (Eur J Biochem, ( 1981), 116, *59-364). L'étude des spectres obtenus avec le N-acétylhéparosane du lot A confirme l'identité chimique du produit au N-acétylhéparosane décrit par W F. Vann Il s'agit de chaînes de polymères constituées de structures répétées de 8-D-glucuronyl-1,4 cd -N-acétyl-D-glucosaminyl-( 1,4). Détermination de la répartition des masses moléculaires par chromatographie d'exclusion Première méthode La répartition des masses moléculaires est déterminée par HPLC d'exclusion dans les conditions suivantes: * Colonne constituée de billes de silice de diamètre 10,im et de porosité 250 A. * Eluant: solution aqueuse de sulfate de sodium 0,5 M. * Débit: 1 ml/min * Détection UV à ' = 205 nm. * L'étalonnage est effectué à l'aide d'une gamme d'oligosaccharides dérivés de l'héparine, de masses moléculaires suivantes: 1324, 1883, 2436, 3411, 3996, 4535, 4995, 5365, 6150, 6671, 7542, 8655, 10088, 11561, 12950, 14809,17387 et 22674 Da. Compte tenu de cette gamme d'étalons, seules les masses moléculaires entre 930 Da et 57000 Da sont évaluées de manière précise On admet que la densité optique détectée est proportionnelle à la quantité de Nacétylhéparosane La précision de la méthode diminue de manière importante pour les hautes masses moléculaires et notamment supérieures à 5.104 Da. Le profil d'élution de la chromatographie d'exclusion du lot A permet de constater que la distribution est polydispersée et qu'elle comporte un pic majoritaire à environ 2 105 Da Une fraction pondérale au moins égale à 70 % du lot A possède une masse comprise entre 1,0 105 et 3,0 105 Da. Deuxième méthode Les résultats ont été vérifiés par HPLC d'exclusion en utilisant un detecteur par diffusion de lumière. * Colonnes: Système composé d'une pré-colonne et de trois colonnes successives: PL-Aquagel-OH (pré-colonne) PL-Aquagel-OH 40 PL-Aquagel-OH 50 PL-Aquagel-OH 60 * Eluant: Solution aqueuse de Na N 3 400 ppm * Débit: 1 ml/min * Température ambiante * Detection: Couplage refractomètre différentiel/diffusion de la lumière La réponse du detecteur de masse (diffusion de la lumière) est proportionnelle a: C x (dn/dc)2 x Mw C = concentration dn/dc = incrément de l'indice de réfraction Mw = masse moléculaire moyenne Le calcul du rapport dn sur dc a été effectué à partir des réponses du réfractomètre différentiel en tenant compte de ceux de deux échantillons de référence (Dextran Mw = 70000 Da et 150000 Da). Cette méthode a confirmé qu'une fraction pondérale au moins égale à % du lot A possède une masse comprise entre 1,0 105 et 3,0 105 Da et que le profil d'élution obtenu après chromatographie d'exclusion du lot A, comporte un pic majoritaire à environ 210000 Da. Suivi de la répartition des masses moléculaires par électrophorèse sur gel de polyacrylamide On a soumis ces échantillons à analyser ainsi qu'un marqueur de fin de migration comprenant du bleu de bromophénol, à une électrophorèse en tampon Tris-borate dans un gel de polyacrylamide à 15 % obtenu par polymérisation d'un mélange 29/1 d'acrylamide et de N,N'-méthylène-bis- -acrylamide. La migration est effectuée sous 40 m A pendant environ 4 h sur un gel de 18 cm de longueur jusqu'à la sortie du marqueur de fin de migration Le gel est alors coloré au bleu alcian, puis à l'argent, selon la technique de S. Pe Ikonen et al (J Bact, ( 1983), 170, 6, 2646) spécifique aux polysaccharides acides. Cette analyse par électrophorèse a été effectuée sur le produit partiellement purifié obtenu à l'issue de l'étape a et le produit purifié, issu de l'étape finale, dans le but de vérifier l'absence de modification importante de la répartition des masses moléculaires du N-acétylhéparosane au cours de la purification. L'observation des profils obtenus pour le produit partiellement purifié obtenu à l'issue de l'étape a et le produit purifié à l'étape finale, ne met pas en évidence de différences importantes (présence de bandes d'intensité comparable aux mêmes distances de migration) Il n'y a donc pas de modification importante de la répartition des masses moléculaires du N-acétylhéparosane au cours de sa purification. Dosage des acides uroniques La quantité d'acide uronique par unité de masse du produit purifié, obtenu à l'issue de l'étape finale, à été déterminée par colorimétrie selon la méthode décrite par T Bitter, (Analytical Biochemistry, ( 1962), 4, 330334). Cette méthode de dosage est basée sur la réaction des glycosaminoglycanes avec le carbazole en milieu acide à chaud, qui provoque une coloration en rose proportionnelle à la quantité d'acide uronique libérée Dans ce cas précis, il s'agit de l'acide glucuronique. Pour le lot A, le produit partiellement purifié obtenu à l'issue de l'étape finale à un taux-d'acide uronique de 2,2,imol/mg. Spectrophotométrie dans le domaine ultra-violet et visible Le produit purifié (lot A), est dissous dans de'l'eau ultra-purifiée et la solution obtenue (C = i mg/ml) est placée dans une cuve de 1 cm de trajet optique Son spectre d'absorption est enregistré entre 200 et 600 nm. Le spectre obtenu permet d'affirmer, en particulier sur la base de l'absorption à 256 nm, que le lot A contient moins de 1 % d'ADN. Dosage des protéines totales Le kit "protein assay" commercialisé par BIORAD est utilisé pour doser les protéines totales La méthode de dosage est basée sur le fait que la longueur d'onde du maximum d'absorbance d'une solution acide de bleu brillant de Coomassie g-250 passe de 465 nm à 595 nm, lorsque des protéines viennent s'y fixer (Reisner et ai, Anal Biochem, ( 1975), 64, 509). Le taux de protéines totales du lot A est inférieur à 1,5 %. Dosage des groupes amino libres (NH 21. Ce dosage a été effectué selon la méthode décrite par Zensaku Yosizawa et al, dans Biochemica et Biophysica Acta, ( 1967), 141, 358365. Le paramètre taux de NH 2 (exprimé en pmol/mg) est un indicateur de quantités d'unités B-D-glucuronyl-1,4 d -N-acétyl-D-glucosaminyl-( 1,4) désacétylées et d'éventuelles impuretés présentes, qui contiennent un groupement amino libre. Le lot A à un taux de NH 2 de 0,1 gmol/mg. PREPARATION Il Préparation d'un N-acétylhéparosane majoritairement de haute masse moléculaire (Procédé Il) 1) Culture de la souche bactérienne Escherichia coli (K 5) et séparation d'un filtrat contenant du N-acétylhéparosane La culture de la souche Escherichia coli SEBR 3282 et la séparation d'un filtrat contenant du N- acétylhéparosane ont été réalisées selon la méthode décrite dans la Préparation I. 2) Isolement et purification d'un N-acétylhéparosane majoritairement de haute masse moléculaire Etape a Dialyse 375 mi de filtrat sont soumis à une dialyse selon le procédé décrit dans la Préparation 1, l 2) Isolement et purification d'un N-acétylhéparosane majoritairement de haute masse moléculaire, Etape bl Après dialyse on obtient environ 1020 mi de solution purifiée. Etape b Purification en milieu acide On ajoute à la solution dialysée une quantité adéquate d'une solution d'HCI 5 N pour obtenir un p H égal à 3,5 On élimine par centrifugation le précipité formé, puis on acidifie la solution avec le même acide (HCI 5 N) pour obtenir un p H égal à 1,8 Un précipité peut se former, qui sera éliminé par centrifugation On neutralise ensuite la solution à l'aide d'une solution de Na OH 5 N. Etape c Précipitation, déshydratation et séchage On ajoute à la solution neutralisée une quantité adéquate de chlorure de sodium pour avoir une solution de 0,5 M en Na CI, puis on ajoute 4 volumes d'éthanol On laisse se former le précipité pendant 5 min à température ambiante On centrifuge à 5000 g pendant 20 min On reprend les culots de centrifugation dansl'éthanol, on agite la suspension obtenue, et on la laisse reposer pendant 1 h à température ambiante On répète les opérations de centrifugation et de mise en suspension On centrifuge à nouveau à 5000 g pendant 20 min On sèche les culots de centrifugation obtenus dans une étuve sous vide à 40 'C pendant 24 h. Etape d Hydrolyse alcaline et dialyse Le produit obtenu à d'étape précédente après séchage est mis en solution à 2,5 % (p/v) dans une solution de Na OH 0,25 N On maintient la solution ainsi obtenue 2 heures à 50 'C On neutralise ensuite à l'aide d'une solution d'HCl 5 N et on soumet ensuite la solution contenant le polysaccharide à une dialyse selon le procédé décrit dans la Préparation 1, l 2) Isolement et purification d'un N-acétylhéparosane majoritairement de haute masse moléculaire, Etape bl. Après dialyse, on obtient environ 990 ml de solution. Etape e Chromatographie d'échange d'anions A la solution dialysée on ajoute des quantités adéquates de pipérazine, d'EDTA et de triton X-100 (Prolabo ) pour avoir respectivement des concentrations de 25 m M en pipérazine, 2 m M en EDTA et 0,2 % (v/v) en triton X-100. Le p H est ensuite ajusté à 3,5 à l'aide d'une solution d'HCI 5 N On dépose cette solution sur une colonne Q-Sepharose Fast Flow de 400 ml, équilibrée dans un tampon pipérazine contenant 25 m M de pipérazine, 2 m M d'EDTA et 0,2 m M de triton X-100 (p H = 3,5). On lave par le tampon pipérazine, on élue avec une solution de Na CI 0,5 M, puis on précipite par 4 volumes d'éthanol. On sèche sous vide à 40 C On obtient ainsi environ 9,85 g de N- acétylhéparosane. Etape f Chromatographie d'exclusion 4 g du produit obtenu au stade précédent sont mis en solution dans ml d'une solution tampon de composition tris-HCI 20 m M p H 7,5 et Na CI 1 M, puis passés sur une colonne de 200 ml d'octyl Sepharose préalablement équilibrée avec le même tampon A la fraction non retenue, on ajoute 4 volumes d'éthanol On lave le précipité formé et on le sèche à 40 C sous vide. On obtient ainsi 3,90 g de N-acétylhéparosane (lot B). 3) Caractérisation du N-acétylhéparosane obtenu à l'issue des différentes étapes de purification Spectre de résonance magnétique nucléaire RMN L'étude des spectres RMN du proton et du carbone 13 C obtenus avec cet N-acétylhéparosane, confirme l'identité chimique du produit au Nacétyl- héparosane décrit par W F Vann (Eur J Biochem ( 1981) 116, 59-364). Détermination de la répartition des masses moléculaires par chromatographie d'exclusion La répartition des masses moléculaires est déterminée par HPLC d'exclusion selon les méthodes utilisées pour la détermination de la répartition des masses moléculaires de Nacétylhéparosanes décrits dans la Préparation I Une fraction pondérale au moins égale à 60 % des chaînes qui constituent le lot B issu de la Préparation II possède une masse moléculaire comprise entre ,0 104 et 2, 5 105 Da. Dosage des acides uroniques Le N-acétylhéparosane issu de l'étape e, a un taux d'acide uronique de 2,2,mole/mg. Spectrophotométrie dans le domaine de l'ultra-violet et visible Le spectre obtenu permet d'affirmer que le N-acétylhéparosane obtenu contient moins de 1 % d'ADN. Dosage de_ protéines totales Le taux de protéines totales du lot B est inférieur à 1 %. Dosage des groupes amino libres (NH 2 _ Le taux de NH 2 est inférieur à 0,1 Mmole/mg PREPARATION 1 i Préparation d'un N-acétylhéparosane majoritairement de haute masse moléculaire (Procédé i 11) 1) Culture de la souche Escherichia coli (K 5) La culture de la souche Escherichia coli SEBR 3282 a été réalisée selon la méthode décrite dans la Préparation I On obtient environ 12 1 de culture contenant du N-acétylhéparosane. 2) Purification préliminaire Etape a Centrifugation A la fin de la culture, on centrifuge la suspension obtenue à 8000 t/min (soit entre 11000 et 14000 g) pendant 20 min. Etape b Mise en contact avec une solution alcaline Après la centrifugation, le culot est éliminé et le surnageant est mis en contact avec une solution de Na OH 0,1 N pendant environ 1 heure. Etape c Préfiltration La solution obtenue à l'étape précédente est soumise à une préfiltration sur filtre 3 M serie 300 en polypropylène. Etape d Concentration sur membrane de seuil de coupure déterminé. Le filtrat obtenu à l'étape c est concentré sur cartouche à fibres creuses Amicon , seuil de coupure 30000 Da ou équivalent On obtient ainsi une solution concentrée en N-acétylhéparosane de haute masse moléculaire. Etape e Dialyse On dialyse la solution concentrée en N-acétylhéparosane de haute masse moléculaire contre de l'eau ultra-purifiée toujours sur système Amicon , à un facteur de dilution très élevé (> 10000). 3) Isolement et purification d'un N-acétylhéparosane majoritairement de haute masse moléculaire: On procéde comme il est indiqué dans la Préparation I l 2) Isolement et purification d'un N-acétylhéparosane majoritairement de haute masse moléculaire, Etape c Etape fl et on obtient un N-acétylhéparosane (lot C) ayant des caractéristiques similaires à celles du lot A, ou comme il est indiqué dans la Préparation II l 2) Isolement et purification d'un N-acétylhéparosane majoritairement de haute masse moléculaire, Etape a Etape fl. PREPARATION IV Préparation d'un N-acétylhéparosane majoritairement de haute masse moléculaire (Procédé IV) 1) Culture de la souche Escherichia coli (K 5) La culture de la souche Escherichia coli SEBR 3282 a été réalisée selon la méthode décrite dans la Préparation I en utilisant comme milieu de culture le milieu C au lieu du milieu A, et le milieu D au lieu du milieu B. La composition du milieu C et du milieu D est précisée dans le tableau 111 (cf page suivante). On obtient ainsi environ 12 I de filtrat contenant du N- acétylhéparosane. 2) Isolement et purification d'un N-acétylhéparosane majoritairement de haute masse moléculaire On procède comme il est décrit dans la Préparation 1, l 2) Isolement et purification d'un Nacétylhéparosane majoritairement de haute masse moléculaire, Etape a, Etape q On obtient ainsi le lot D. 3) Caractérisation du Nacétylhéparosane obtenu 2 Détermination de la répartition des masses moléculaires par chromatographie d'exclusion Les méthodes utilisées sont identiques à celles décrites dans la Préparation I l 3) Caractérisation du N-acétylhéparosane obtenu à l'issue des différentes étapes de purification: Détermination de la répartition des masses moléculaires par chromatographie d'exclusion Première et deuxième méthodel. L'examen du profil d'élution de la chromatographie d'exclusion du lot D, permet de constater que la distribution des masses moléculaires est polydispersée et qu'elle comporte un pic majoritaire à environ 110000 Da. Une fraction pondérale au moins égale à 75 % du lot D possède une masse comprise entre 1,0 104 et 2,5 105 Da. Dosage des acides uroniques Le taux d'acide uronique de 2,0 pmole/mg. Dosage des groupes amino libres (NH 2 _ Le taux de NH 2 du lot est inférieur à 0,1 pmol/mg TABLEAU III Composition et préparation du milieu C et du milieu D MILIEU C Le milieu C est préparé par la réunion des trois solutions stériles cidessous: Solution N'i dans 700 mi d'eau ultra-purifiée dissoudre dans l'ordre: Complexant: N'lTris-(hydroxyméthyl) méthyli glycine (Tricine commercialisé par Fluka ) 360 mg Fe SO 4,7 H 20 280 mg Ca CI 2, 2 H 20 6, 7 mg Mg CI 2, 6 H 20 1270 mg K 2 SO 4 500 mg KCI 5000 mg Hydrolysat de caséine (source principale d'acides aminés) HY CASE SF (commercialisé par Sheffield ) 25000 mg Extrait de levure (commercialisé par Difco ) 18000 mg Solution d'oligo-éléments (cf tableau Il, Préparation I) 1 ml Agent antimousse Struktol J 673 (commercialisé par Schill et Seilacher ) quelques gouttes à la pipette Pasteur. Ajuster le p H à 7,4 avec une solution de KOH (d = 1,38) et compléter à 850 ml avec de l'eau ultra-purifiée Autoclaver le milieu 45 min à 120 C. Solution N 2 Dans environ 40 ml d'eau ultra-purifiee, dissoudre 5 g de K 2 HPO 4 puis ajuster à 50 ml avec le même solvant Filtrer la solution obtenue à travers un filtre de porosité 0,2 pm. Solution N 3 Dissoudre 20,7 g de glycérol dans une quantité adéquate d'eau ultra-purifiée et ajuster le volume à 100 ml avec le même solvant Autoclaver à 110 C pendant 30 minutes. MILIEU D La préparation du milieu D est identique à celle du milieu C, à la différence près, qu'il convient d'ajouter en plus 20 g de tampon p H = 7, 2: (acide 3-morpholinopropanesulfonique) après l'addition de l'agent anti- mousse. PREPARATION V Préparation d'un héparosane (dérivé N-désacétylé à 40 %) On dissout 3,7 g du N-acétylhéparosane décrit dans la préparation IV (lot D) dans 74 ml de Na OH 1 N On porte la solution à 50 C et on laisse réagir à cette température pendant 8 heures sous agitation et sous azote On ajuste ensuite le p H à environ 8 à l'aide d'une solution d'HCI 2 N, on dialyse la solution obtenue contre de l'eau ultra-purifiée, puis on la lyophilise. Après la lyophilisation, on obtient 2,91 g de produit (lot E). Taux de N-desacétylation Le dosage des groupes amino-libres (NH 2) du produit obtenu après lyophilisation indique que le N-acétylhéparosane à été N-désacétylé à 40 %. PREPARATION VI Préparation d'un héparosane N-sulfaté (dérivé N-désacétylé à 80 %) Comme matière première pour les différentes modifications chimiques, on utilise un N-acétylhéparosane appelé lot F préparé selon le procédé décrit dans la Préparation II. Le taux d'acide uronique de ce produit est de 2,41 prmoles/mg. Etape a N-Désacétylation partielle On dissout 1,9 g du lot F dans 38,5 ml de Na OH 2 N On porte la solution à 50 C et on laisse réagir à cette température pendant 8 heures sous azote. On ajuste ensuite le p H à 8,25 par addition de HCI 2 N On dialyse contre de l'eau ultra-purifiée puis on lyophilise. On obtient ainsi 1,6 g de produit. Taux de N-désacétylation Le dosage des groupes amino-libres (NH 2) indique que le N-acétylhéparosane a été N-désacétylé à 80 %. Etape b N-sulfatation On dissout 1,33 g du produit obtenu à l'étape précédente dans 57 ml d'eau ultra-purifiée, on ajoute 1,9 g de Na 2 CO 3 et 1,9 g de complexe trioxyde de soufre-triméthylamine et on porte à 55 C pendant 20 heures On ajuste ensuite la conductivité de la solution à celle d'une solution de Na CI 0,5 M par addition d'eau déminéralisée et on précipite par 4 volumes d'éthanol On centrifuge, on reprend le culot avec une solution de Na CI 0,5 M, on précipite par 4 volumes d'éthanol et on centrifuge. On dissout le culot dans l'eau ultra-purifiée et on dialyse contre de l'eau ultra-purifiée selon le procédé décrit dans la Préparation I puis, on lyophilise. On obtient ainsi 1,809 g d'héparosane N-sulfaté. HEPAROSANES-N O-SULFATES EXEMPLE 1 Héparosanes-N O-sulfatés: dérivés N-désacétylés à 80 % ayant un taux de sulfatation de 2,6 Etape a Formation du sel de tétrabutylammonium On dissout 800 mg de l'héparosane N-sulfaté obtenu selon la Préparation VI (le N-acétylhéparosane utilisé comme matière première étant préparé selon la préparaton IV), dans 100 ml d'eau On dépose cette solution sur une colonne d'échange d'ions à base de polystyrène réticulé par le divinylbenzène (Dowex 50 W 8 de Dow Chemical 20-50 Mesh) préalablement conditionnée en milieu acide, de façon à régénérer la forme acide du produit. Le p H de l'éluat est amené à 7 à l'aide d'une solution de tétrabutylammonium ( 40 % p/v) L'addition de la solution est arrêtée quand l'éluat est complètement neutralisé (p H = 7) On lyophilise. Apres lyophilisation on obtient environ 1,3 g de sel. Etape b O-sulfatation On dissout le sel obtenu à l'étape précédente dans 80 ml de formamide, on ajoute 5,6 g de complexe trioxyde de soufrepyridine (commercialisé par Aldrich sous la réf 5755-6) On laisse réagir 6 heures à C puis on ajoute 16 ml de Na CI 2 M On porte à p H 7 à l'aide d'une solution de Na OH 5 N et on précipite par 2 volumes d'éthanol On reprend le précipité avec une solution de Na CI 0,5 M, on re-précipite avec 2 volumes d'éthanol, on dialyse contre de l'eau ultra-purifiée et on concentre au Rotavapor. Etape c Gel-filtration La solution concentrée obtenue à l'étape b est fractionnée par gel filtration en utilisant une colonne Sephacryl S 300 HR et en utilisant comme éluant une solution de Na CI 0,5 M. On recueille les fractions contenant un héparosane-N,O-sulfaté constitué de chaînes ayant des masses moléculaires moyennes de 100000 à 200000 Da, comme aussi les fractions contenant un héparosane-N,O-sulfaté constitué de chaînes ayant des masses moléculaires moyennes d'environ 50000 Da et d'environ 12000 Da. A chacune de ces trois fractions, on ajoute 5 volumes d'éthanol, on les soumet à une dialyse contre de l'eau ultra-purifiée et on soumet les solutions obtenues après dialyse, à une lyophilisation. On obtient ainsi 3 lots d'héparosane-N,O-sulfatés: le lot 1 A est un héparosane-N,O-sulfaté constitué de chaînes ayant une masse moléculaire moyenne de 150000 à 200000 Da Cet héparosane-N,O-sulfaté est constitué d'au moins 70 % en masse de chaînes de masse moléculaire de 1,0 105 à 5,0 105 Da On isole 0,140 g de cet héparosane-N,O-sulfaté. le lot 1 B est un héparosane-N,O-sulfaté constitué de chaînes ayant une masse moléculaire moyenne d'environ 50000 Da Cet héparosane- N,O-sulfaté est constitué d'au moins 70 % en masse de chaînes de masse moléculaire de 2,0 104 à 1,0 105 Da On isole 0,350 g de cet héparosaneN,O-sulfaté. le lot 1 C est un héparosane-N,O-sulfaté constitué de chaînes ayant une masse moléculaire moyenne de 12000 Da On isole environ 0,100 g de ce dernier produit. Les caractéristiques des trois lots d'héparosane-N,O-sulfaté décrits dans cet exemple sont rassemblés dans le tableau IV. TABLEAU IV Caractéristiques des héparosanes-N,O-sulfatés correspondant aux lots 1 A, l B et 1 C Taux d'acide uronique (mol/mg) Taux de NH 2 (/zmol/mg) Taux de désacétylation Taux de sulfatation (rapport sulfate /carboxyle) Lot 1 A 1,48 ( 1975), 39, 168-176. EXEMPLE 2 Héparosanes-NO-sulfatés; dérivés N-désacétylés à 40 % ayant un taux de sulfatation de 2,1 Etape a Formation du sel de tétrabutylammonium: On utilise comme matière première, un héparosane préparé selon la Préparation V (lot E) et on procède selon la méthode décrite dans l'Exemple 1, Etape a Le N-acétylhéparosane utilisé comme matière première pour la préparation d'héparosane a été préparé selon le procédé de la Préparation I. Etape b N,O-sulfatation partielle: On dissout 421 mg du sel obtenu à l'étape précédente dans 35 ml de diméthylformamide et on ajoute 3,71 g de complexe trioxyde de soufre -pyridine. On laisse réagir sous agitation pendant 6 h à température ambiante A un volume du milieu réactionnel on ajoute du chlorure de sodium jusqu'à l'obtention d'une solution de concentration 0,33 M en chlorure de sodium, puis 2 volumes d'éthanol. On laisse se former le précipité. On centrifuge et on élimine le surnageant Le culot de centrifugation est repris dans une solution de Na CI 0,5 M, qu'on neutralise On ajoute ensuite 2 volumes d'éthanol. On laisse se former le précipité, on centrifuge et on reprend le culot de centrifugation avec de l'eau ultra-purifiée. On dialyse contre de l'eau ultra-purifiée et on lyophilise. Le lyophilisat obtenu présente les caractéristiques suivantes: * taux de NH 2 libre: 0,10 pmol/mg * taux de sulfatation: 1,9 par unité disaccharidique Etape c N-sulfatation totale On mélange dans un volume de 20 ml d'eau ultra-purifiée par gramme de produit N,O- sulfaté engagé, 1 partie pondérale de produit N,O-sulfaté, 1 partie pondérale de bicarbonate de sodium, 1 partie pondérale du complexe trioxyde de soufre-triméthylamine et on laisse réagir à 550 C sous agitation pendant 20 h. On dilue ensuite le mélange réactionnel (facteur de dilution 10), puis on ajuste la conductivité de la solution obtenue à celle d'une solution de chlorure de sodium 0,5 M. Ensuite sont réalisées une précipitation par ajout de 2 volumes d'éthanol, une centrifugation suivie d'une reprise des culots de centrifugation par une solution de Na CI 0,5 M, puis une seconde précipitation par ajout de 2 volumes d'éthanol. Après reprise dans de l'eau ultra-purifiée et dialyse contre de l'eau ultra-purifiée, le produit est lyophilisé et séché à 40 'C sous vide. Le lyophilisat obtenu (lot 2) présente les caractéristiques suivantes: * taux de NH 2 libres: 0,02 Mmol/mg * taux de sulfatation: 2,0 par unité disaccharidique On constate que le taux de NH 2 résiduel ( 0,02 pmol/mg), est faible et inférieur à celui de l'héparosane-N,O-sulfaté obtenu à l'issue de l'étape de la N,O-sulfatation partielle Cela démontre le caractère total de la réaction de la N-sulfatation. Le lot 2 contient au moins 70 % en masse, de chaînes de masse moléculaire comprise entre 2,0104 Da et 2,5 105 Da. EXEMPLE 3 Héparosane-N 0-sulfaté: Dérivé désacétylé à 80 % ayant un taux de sulfatation de 26 Comme matière première, on utilise 3,35 g d'un héparosane-N-sulfaté, préparé selon le procédé décrit dans la Préparation VI (Etapes a et b). Ce composé a été obtenu à partir de 4 g d'un N-acétylhéparosane préparé selon le procédé décrit dans la Préparation Iil. L'héparosane-N,-sulfaté utilisé comme matière première est constitué à 70 % de chaînes ayant une masse moléculaire comprise entre 20000 et 150000 Da, et présente les caractéristiques suivantes: * Taux d'acide uronique: 1,5 pmoles/mg * Taux de NH 2 libres: 0,10 /mole/mg * Taux de désacétylation: 80 % Etape a Formation du sel de tétrabutylammonium On dissout l'héparosane-N,-sulfaté dans 400 ml d'eau ultra-purifiée et I'on procède comme il est décrit dans l'Exemple 1 (Etape a). Après lyophilisation, on obtient 6,66 g de sel. Etape b O-sulfatation On dissout 297 mg du sel obtenu à l'étape précédente dans 20 ml de formamide et on ajoute 1 g du complexe trioxyde de soufre-pyridine, puis l'on procède comme il est décrit dans l'Exemple 1, Etape b. On obtient ainsi 260 mg d'un héparosane-N,O-sulfaté. Les caractéristiques de cet héparosane-N,O-sulfaté (lot 3) sont indiquées dans le Tableau V. TABLEAU V Caractéristiques du produit correspondant au lot 3 Taux d'acide uronique (/mol/mg) Taux de NH 2 (/molm/mg) Taux de désacétylation Taux de sulfatation (rapport sulfate /carboxyle) Lot 3 1,50 évaluée à 80000-150000 Da. Le lot 3 contient au moins 70 % en masse de chaînes de masse moléculaire comprise entre 2,5 104 Da et 2,5 105 Da, et au moins 60 % en masse, de chaînes de masse moléculaire comprise entre 4,5 104 et 2,5 105 Da. REVENDICATIONS 1 Héparosanes-N,O-sulfatés constitués par des chaînes ou par un mélange de chaînes de masse moléculaire entre 1,5 104 et 4,0 106 Da, caractérisées par une structure disaccharidique répétée de formule 1: CH 20 G COOH o o NHE QG (i) dans laquelle, * E représente, dans O à 80 % des unités disaccharidiques desdits héparosanes-N,O-sulfatés, un groupe acétyle, et dans les unités disaccharidiques restantes, un groupe sulfate et éventuellement un atome d'hydrogène, G représente un atome d'hydrogène et un groupe sulfate, et les sels héparosanes-N,O- sulfatés. pharmaceutiquement acceptables 2 Héparosanes-N,O-sulfatés selon la revendication 1, caractérisés en ce que E représente un groupe acétyle et un groupe sulfate. 3 Héparosanes-N,O-sulfatés selon l'une quelconque des revendications 1 et 2, caractérisés en ce que le degré de sulfatation, exprimé comme le rapport sulfate/carboxyle est compris entre 1,5 et 3,0. 4 Héparosanes-N,O-sulfatés selon la revendication 1, constitués par des chaînes ou par un mélange de chaînes de masse moléculaire entre 1,5 104 et desdits 4,0 106 Da, caractérisées par une structure disaccharidique répétée de formule 1: CH 20 OG COOH O ( NHE OG dans laquelle, E représente, dans O à 80 % des unités disaccharidiques desdits héparosanes-N,O-sulfatés, un groupe acétyle, et dans les unités disaccharidiques restantes, un groupe sulfate et éventuellement un atome d'hydrogène, G représente un atome d'hydrogène et un groupe sulfate, le degré de sulfatation, exprimé comme rapport sulfate/carboxyle étant de 1,5 à 3,0, les deux extrémités, réductrice et non réductrice des chaînes desdits héparosanes-N,O-sulfatés étant des unités uroniques sulfatées ou non, de la glucosamine sulfatée ou non, ou de la N-acétyl glucosamine, sulfatée ou non, et les sels pharmaceutiquement acceptables desdits héparosanes-N,O-sulfatés. 5 Héparosanes-N,O-sulfatés selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, caractérisés en ce que le groupe acétyle des unités disaccharidiques est présent à un taux inférieur ou égal à 60 %. 6 Héparosanes-N,O-sulfatés selon la revendication 1, caractérisés en ce qu'ils contiennent moins de 0,2 pmol/mg de groupe amino libre (NH 2). 7 Héparosanes-N,O-sulfatés selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, constitués par au moins 70 % en masse de chaînes de masse moléculaire entre 1,0 1 05 et 5,0 105. 8 Héparosanes-N,O-sulfatés selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, constitués par au moins 70 % en masse de chaînes de masse moléculaire entre 2,5 104 Da et 2,5 105 Da. 9 Héparosanes-N,O-sulfatés selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, constitués par au moins 70 % en masse de chaînes de masse moléculaire entre 2,0 104 Da et 1,0 105 Da. Composition d'héparosane-N,O-sulfaté caractérisée en ce qu'elle contient au moins 70 % en masse d'un héparosane-N,O-sulfaté selon l'une quelconque des revendications 1 à 9. 11 Procédé de préparation d'une composition contenant 70 % à 100 % d'un héparosane-N,O-sulfaté selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il comprend la séquence des étapes suivantes: étape a: culture d'une souche d'Escherichia coli (K 5), étape b: isolement et purification précédé ou non d'une purification préliminaire du N- acétylhéparosane formé pour obtenir une composition contenant 70 % à 100 % d'un N-acétylhéparosane de haute masse moléculaire constitué par un mélange de chaînes de masse moléculaire entre 1,0 104 et 2,0 106 Da, caractérisées par une structure disaccharidique répétée de formule Il: CH 20 H COOH O O OH O Ho a (Il) NHCOCH 3 OH étape c: désacétylation partielle de cette composition de Nacétylhéparosane pour obtenir une composition contenant 70 % à 100 % d'un héparosane constitué par un mélange de chaînes de masse moléculaire entre 1,0 104 et 2,0 106 Da, caractérisées par une structure disaccharidique répétée de formule Ii: CH 2 OH COOH ( 111) OH dans laquelle R' représente, dans O à 80 % des unités disaccharidiques, un groupe acétyle, et dans les unités disaccharidiques restantes un atome d'hydrogène, étape d: -soit une N-sulfatation totale ou partielle pour obtenir une composition contenant 70 à 100 % d'un héparosane N-sulfaté constitué par un mélange de chaînes de masse moléculaire entre 1,0 104 et 2,0 106 Da caractérisée par une strucuture disaccharidique répétée de formule IV: CH 20 H (IV) NHE OH dans laquelle E représente dans O à 80 % des unités disaccharidiques un groue acétyle et dans les unités disaccharidiques restantes un groupe sulfate et éventuellement un atome d'hydrogène, cette étape de N-sulfatation partielle ou totale étant suivie d'une étape de O-sulfatation partielle ou totale, -soit une N,O-sulfatation partielle de cette composition d'héparosane, -soit une N,O-sulfatation partielle de cette composition d'héparosane suivie d'une étape de N- sulfatation totale, et comporte éventuellement une ou plusieurs étapes de fractionnement des masses moléculaires effectuées à la fin des étapes a, b, c ou d. 12 Procédé selon la revendication 11 caractérisé en ce que la souche d'Escherichia coll (K 5) est la souche SEBR 3282 (déposée auprès de la CNCM de l'institut Pasteur, Paris, France, sous le N O 1-1013) ou un mutant de cette souche, soit spontané soit induit. 13 Procédé selon la revendication 11 caractérisé en ce que la culture de la souche d'Escherichia coll (K 5) est effectuée dans un milieu de culture riche en glycérol. 14 Procédé selon la revendication 11, caractérisé en ce que l'isolement et la purification du N-acétylhéparosane, comprennent au moins une étape de précipitation alcoolique, et au moins une étape de chromatographie d'échange d'ions. Procédé selon la revendication 11, caractérisé en ce que l'isolement et la purification du N-acétylhéparosane sont réalisés à l'aide d'un procédé comportant la séquence des étapes suivantes: étape ai: Précipitation par l'éthanol, étape b 1: Dialyse, étape c 1: Précipitation par l'éthanol, puis déshydratation et séchage, étape d 1: Purification par chromatographie d'échange d'anions, étape el: Précipitation par l'éthanol de l'éluat obtenu par l'étape d 1, déshydratation, séchage et broyage, dans lequel une des étapes a 1 ou c 1 peut être supprimée. 16 Procédé selon la revendication 11, caractérisé en ce que l'isolement et la purification du N-acétylhéparosane sont réalisés à l'aide d'un procédé comportant la séquence des étapes suivantes: étape a'l: Dialyse, étape b'1: Purification en milieu acide, élimination des impuretés insolubles dans des solutions aqueuses de p H 3,5 et p H 1,8, étape c'1: Précipitation par l'éthanol, puis déshydratation et séchage, étape d'1: Hydrolyse alcaline et dialyse, étape e'l: Purification par chromatographie d'échange d'anions, étape f'l: Purification par chromatographie d'exclusion. 17 Procédé selon la revendication 11, caractérisé en ce que le Nacétylhéparosane obtenu de la culture d'une souche d'Escherichia coli (K 5) est soumis avant l'isolement et la purification à une purification préliminaire, réalisée à l'aide d'un procédé comportant la séquence des étapes suivantes: étape a"l: Centrifugation de la suspension obtenue à la fin de la culture, étape b": Mise en contact du surnageant avec une solution alcaline, étape c" 1: Préfiltration, étape d" 1: Concentration sur membrane de seuil de coupure déterminé, étape e"l: Dialyse, dans lequel l'étape e"l peut être supprimée. 18 Composition pharmaceutique contenant comme principe actif un héparosane-N,O-sulfaté selon l'une quelconque des revendications 1 à 9, en association ou en mélange avec un excipient inerte, pharmaceutiquement acceptable. 19 Composition pharmaceutique contenant comme principe actif une composition d'héparosane-N,O-sulfaté selon la revendication 10 en association ou en mélange avec un excipient inerte, pharmaceutiquement acceptable. Composition pharmaceutique selon l'une quelconque des revendications 18 et 19 utilisable pour la régulation de la coagulation.