Brevet FR2671559A1 — publié le 19920717

La présente invention est relative à des séquences nucléotidiques codant pour le récepteur p3- adrénergique (RAB3) murin, à l'utilisation desdites séquences comme sondes et pour l'expression de peptides et/ou de fragments de ceux-ci ayant une activité de RA53 murin, aux vecteurs utiles pour ladite expression, ainsi qu'aux hôtes cellulaires contenant ledit vecteur. La présente invention est également relative à des anticorps polyclonaux et monoclonaux dirigés contre lesdits peptides et utilisables, notamment pour la détection de récepteurs ss3-adrénergiques murins, ainsi qutà un procédé de criblage de substances, à action agoniste ou antagoniste vis-à-vis des peptides ayant une action de récepteur ss3-adrénergique et à des trousses ou kits pour la détection du degré d'affinité de différentes substances pour lesdits peptides à activité de récepteur ss3- adrénergique. De telles substances sont notamment utilisables comme médicaments, dans le traitement de l'obésité, du diabète gras et du diabète des sujets non insulino-dépendants ainsi que dans le traitement des hyperlipidémies. I1 est connu que les catécholamines telles que l'adrénaline et la noradrénaline, les agonistes synthétiques de ces catécholamines, qui miment leurs fonctions biologiques et les antagonistes, qui bloquent ces fonctions biologiques, exercent leurs effets en se liant à des sites de reconnaissance (récepteurs membranaires) spécifiques, situés sur les membranes cellulaires. Deux classes principales de récepteurs adrénergiques ont été définies, les récepteurs adrénergiques a et les récepteurs adrénergiques p. Dans l'ensemble de ces deux classes, on distingue, maintenant, cinq sous-types de récepteurs aux catécholamines (al, a2, pl, ss2 et ss3-RA). Leurs gènes ont été récemment isolés et identifiés (S. COTECCHIA et al., 1988, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 85, 7159-7163 B.K. KOBILKA et al., 1987, Science, 238, 650-656 T. FRIELLE et al., 1987, Proc. Natl. Acad. Sci. USA 84, 7920-7924 ; L.J. EMORINE et al., 1987, Proc. Natl. Acad. Sci., USA, 84, 6995-6999 ; L.J. EMORINE et al., 1989, Science, 245, 1118-1121). L'analyse de ces gènes a permis de reconnaître leur appartenance à une famille de récepteurs membranaires intégraux présentant certaines homologies (R.A.F. DIXON et al., 1998, Annual Reports in Medicinal Chemistry, 221-233 ; L.J. EMORINE et al., 1988, Proc. NATO Adv. Res. Workshop), notamment au niveau de 7 régions transmembranaires, qui sont couplées à des protéines régulatrices, appelées protéines G, susceptibles de fixer des molécules de guanosine triphosphate (GTP). Ces récepteurs membranaires, lorsqu'ils ont fixé le ligand approprié (agoniste ou antagoniste), subissent un changement de conformation, qui induit un signal intracellulaire, qui modifie le comportement de la cellule cible. Dans le cas des récepteurs 5-adrénergiques, lorsqu'ils se lient avec des agonistes des catécholamines, ils catalysent l'activation d'une classe de protéines G, qui stimule à son tour l'activité de l'adénylate cyclase, alors que les antagonistes des RAP agissent en compétition avec les agonistes pour la liaison au récepteur et empêchent l'activation de l'adénylate cyclase. Lorsque l'adénylate cyclase est activée, elle catalyse la production d'un médiateur intracellulaire ou second messager, notamment 1'AMP cyclique. Les Inventeurs ont récemment mis en évidence de nouveaux récepteurs ss-adrénergique chez l'Homme, dénommés RA-HuP3, et caractérisés par des propriétés différentes de celles des récepteurs ssl et ss2, notamment en ce qu'ils se comportent de façon différente vis-à-vis de substances respectivement antagonistes et agonistes des récepteurs ssl et ss2 (Demande de Brevet français n 89 00918). Un tel récepteur RA-Huss3 est plus particulièrement constitué par une séquence de 402 amino-acides et est considéré comme comportant également sept régions transmembranaires hydrophobes séparées par des boucles hydrophiles intra- et extra-cellulaires. Poursuivant leurs travaux dans cette voie, les Inventeurs, ont cherché à mettre en évidence un tel Rays3 chez les rongeurs et plus particulièrement chez les murins afin de pouvoir disposer notamment d'un modèle d'étude des ligands ss-adrénergiques. La présente invention a pour objet une séquence d'acide nucléique, caractérisée en ce qu'elle comprend le gène murin codant pour un peptide ayant une activité de récepteur '33-adrénergique, c'est-à-dire qu'il est capable de participer à l'activation de l'adénylate cyclase en présence d'au moins un des agonistes suivants : BRL 28410, BRL 37344, CGP 12177 et (l)-isoprotérénol. L'agoniste CGP 12177 est notamment décrit dans l'article au nom de N. MOHELL et al. (Biochem. J., 1989, 261, 401-405) et les agonistes BRL 28410 et BRL 37344 sont décrits dans l'article au nom de J.R.S. ARCH et al. (Nature, 1984, 309, 5964, 163-165). Selon un mode de réalisation avantageux de ladite séquence, celle-ci comporte 1920 paires de bases et comprend la séquence en nucléotides de formule I ciaprès GATCTGTMTCCCAGCACTGGGGAGGTTGAGGCAGAAGGATCTGGAGGTCCAGACCMSCTGGGCAACATATAGAMGACTATCTCAMCAATMGATAC 100 CTTAGGGAGAGCATCCAAGCAGMGAGGGGCTATCTTGGATGGTTTGGGI'TGTTCGGTTTTGTTTTGGTTTGTTTCTGGATGGTTGCCTTCCTTGTTGGG 200 TAAAGGATGGGTGCGGGGGTTTCTCTTTGCAGGGTTGCCTCAGGTTCTGCCAGGAAGGAGCTGCTGAGCTCCAGGAAACCGGTGCTGAGGGAGTGT 300 CAAGACAGGACGCCCCTCTCCACCCTCCAATTCCCACCAGAGGCCTCTCTTGTGACTATTGGACGCTGTTCCTTTAAAAGCAGCCACTCCTCCCGGCAAC 400 TAGGGTGTACATGGGGGGTGAGATGGAGGGAAGCTGACAGACTTACCGCAGCAATTAGGGAAGATGGCCCAGGCTGCAGAGTCGCTCGCAAGCGCTACT 500 GTCCCGTTCCCTAAGCCAGCGGGTCTGGGGAGGAGGGGGAACCTTCGCACCCCAGGCGCCACACGAG ATG CCT CCG TGG CCT CAC AGA MC 591 GGC TCT CTG GCT TTC TGG TCG GAC GCC CCT ACC CTG GAC CCC AGT CCA GCC MC ACC AGT GGG TTG CCA GGA GTA 666 CCA TGG GCA GCG CGA TTG CGT GGG GCA TTG CTG GCG CTG GCC ACG GTG CGA GCG MC CTG CTG GTA ATC ATA GCC 741 ATC CGC CGC ACG CCG AGA CTA CAG ACC ATA ACC AAC GTG TTC GTG ACT TCA CTG GCC GCA GCT GAC TTG GTA GTG 816 GGA CTC CTC GTA ATG CCA CCA GGG GCC ACA TTG GCG CTG ACT GGC CAT TCG CCC TTG GGC GM ACT GGT TGC GAA 891 CTG TGG ACG TCA GTG GAC GTG CTC TGT GTA ACT GCT AGC ATC GAG ACC TTG TGC CGC CTG GCT GTG GAC CGC TAC 966 CTA CCT GTC ACC AAC CCT TTG CGT TAC GGC ACG CTG GTT ACC AAG CGC CGC GCC CGC GCG GCA GTT GTC CTG GTG 1041 TGG ATC GTG TCC GCT GCC GTG TCC TTT GCG CCC ATC ATG AGC CAG TGG TGG CGT GTA GGG CGA GAT GCC GAG GCA 1116 CAG GAA TGC CAC TCC AAT CCG CGC TGC TGT TCC TTT GCC TCC MC ATG CCC TAT GCG CTG CTC TCC TCC TCC GTC 1191 TCC TTC TAC CTT CCC CTC CTT GTG ATG CTC TTC GTC TAT GCT CGA GTG TTC GTT GTG GCT MG CGC CAA CGG CAT 1266 TTG CTG CGC CGG GAA CTG GGC CGC TTC TCG CCC GAG GAG TCT CCG CCG TCT CCC TCG CGC TCT CCG TCC CGT GCC 1341 ACA GGC GGG ACA CCC GCG GCA CCG GAT GGA GTG CCC CCC TGC GGC CGG CGG CCT GCG CGC CTC CTG CCA CTC CGG 1416 GM CAC CGC GCC CTG CGC ACC TTA CGT CTC ATT ATG CGC ATC TTC TCT CTG TGC TGG CTG CCC TTC TTC CTG GCC 1491 MC GTG CTG CCC CGA CTC GCG GGG CCC TCT GTA GTT CCC AGC GGA GTT TTC ATC GCC CTG AAC TGG CTG GGC TAT 1566 GCC MC TCC GCC TTC AAC CCG GTC ATC TAC TGC CGC AGC CCG GAC TTT CGC GAC GCC TTC CGT CGT CTT CTG TGT 1641 AGC TAC GGT CGC CGT GGA CCG GAG GAG CCA CGC GCA GTC ACC TTC CCA GCC AGC CCT GTT GAA GCC AGG CAG AGT 1716 CCA CGC CTC AAC AGG TAG GGGACACGAGCGGGGGACCGGAGTCTCTGGGTGGGGACGTCTGTGTCTGTATTTTTGAGTTTGGAGATTGCGGGAG 1810 GGGMGATGTAGATGGGGGTGCGGTGTGTGTGTGGGTGGGGGGTGGCCTTTGTCTTGAGAGGACAGMAAGAGGTAGGMCTAAAACGGGCCCTTTCTCT 1910 TGTTGGATCC 1920 (I) ainsi que les séquences dérivées de celle-ci et les fragments de ladite séquence et des séquences dérivées. Ladite séquence comprend notamment les sites de restriction uniques suivants AlwN I, Sac I, Stu I, Dra I, Mse I, Bbe I, Nar I, Xcm I, NCo I, BspM I, Afl III, Pvu I, Nhe I, BstE II, BspH I, Bsm I, Nsp7524 I, NspH I, Xho I, Sac II, Eag I, Nae I, PaeR7 I, EcoN I, Fsp I, Bbv II, Nru I, Drd I, BamH I. L'invention a également pour objet les fragments de ladite séquence utiles pour l'expression du peptide correspondant et/ou la détection du gène murin codant pour le récepteur ss3 murin. Parmi lesdits fragments, elle englobe entre autres - une séquence constituée d'un segment de 1164 paires de bases nucléotidiques, qui correspond aux nucléotides 568-1731 de la séquence de formule I. - une séquence constituée d'un segment de 1360 paires de bases contenant la région codante du gène ss3 murin et une partie de la région 3' non traduite. - une séquence constituée d'un segment de 280 paires de bases nucléotidiques, qui correspond aux nucléotides 1640-1920 de la séquence de formule I. - une séquence constituée d'un segment de 608 paires de bases nucléotidiques, situé entre les régions transmembranaires TM3 et TM6 et qui correspond aux nucléotides 895-1503 de la séquence de formule I. - une séquence constituée d'un segment de 297 paires de bases nucléotidiques, allant du codon d'initiation de la traduction jusqu'à la fin du domaine TM2 et qui correspond aux nucléotides 567-864 (région du gène codant pour la partie amino-terminale du peptide) de la séquence de formule I. Font également partie de l'invention, les acides nucléiques variants par rapport à ceux ci-dessus définis et qui comportent certaines mutations localisées dans la mesure où ces acides nucléiques variants s'hybrident avec les acides nucléiques précédemment définis ou avec des fragments de ceux-ci. On entend, au sens de la présente invention, par séquence dérivée, aussi bien une séquence d'ADN ou d'ARN simple-brin ou double-brin, que leurs séquences complémentaires. La présente invention a également pour objet des sondes nucléotidiques, caractérisées en ce qu'elles s'hybrident avec les séquences nucléotidiques telles que définies ci-dessus mais ne s'hybrident pas avec les gènes codant pour les récepteurs '31 et ss2 adrénergiques, ni avec 1'ARN messager desdits récepteurs ssl et ss2 adrénergiques, et en ce qu'elles sont éventuellement marquées à l'aide d'un marqueur tel qu'un isotope radioactif, une enzyme appropriée ou toute autre substance non radioactive appropriée. Selon un mode de réalisation avantageux de ladite sonde, sa séquence est homologue ou complémentaire de celle d'un segment d'au moins 10 pb de la séquence I. Au sens de la présente invention, "séquence homologue" englobe non seulement les séquences identiques à la séquence I, ou à un fragment de celle-ci, mais également celles n'en différant que par la substitution, la délétion ou l'addition d'un petit nombre de nucléotides, à condition que les séquences ainsi modifiées aient une spécificité d'hybridation équivalente à celle de la séquence (I) ou du segment considéré. De même, on entend par "séquence complémentaire", non seulement les séquences strictement complémentaires de la séquence (I) ou de ses segments, mais également des séquences modifiées, comme indiqué précédemment, possédant une spécificité d'hybridation équivalente à celle desdites séquences strictement complémentaires. Les conditions d'hybridation sont définies comme suit Pour les sondes les plus courtes, c'est-à-dire d'environ 10 à environ 100 nucléotides, des conditions d'hybridation appropriées sont les suivantes 750 mM de NaCl, 75 mM de Tri-sodium citrate, 50 Fg/ml d'ADN de sperme de saumon, 50 mM de phosphate de sodium, 1 mM de pyrophosphate de sodium, 100 WM d'ATP, 10 à 25 % de formamide, 1 % Ficoll ("PHARMACIA" poids moléculaire moyen de 400,00), 1 % de polyvinylpyrrolidone, 1 % de sérum albumine bovine, pendant 14 à 16 h à 42 C. Pour les sondes les plus longues, c'est-à-dire présentant plus d'environ 100 nucléotides, des conditions d'hybridation appropriées sont celles indiquées précédemment pour les sondes les plus courtes, mais dans lesquelles le milieu sus-défini contient 40 % de formamide au lieu de 10 à 25 % de formamide. Selon une disposition avantageuse de ce mode de réalisation, ladite sonde peut être avantageusement définie par l'une quelconque des séquences nucléotidiques définies ci-dessus et notamment - le fragment de 1920 paires de base, qui correspond à la totalité de la séquence de formule I - le fragment d'environ 600 pb, qui correspond au fragment situé entre les régions transmembranaires TM3 et TM6 de la séquence de formule I ci-dessus - le fragment d'environ 300 pb qui correspond à la région du gène codant pour la partie amino-terminale du peptide, allant du codon d'initiation de la traduction jusqu'à la fin du domaine TM2. - le fragment d'environ 280 paires de bases qui correspond au segment 1640-1920 de la séquence de formule I. De telles sondes ont notamment l'avantage de permettre la caractérisation des lignées consanguines génétiquement définies de souris diabétiques et/ou obèses, notamment des lignées db/db, ob/ob, NOD. La présente invention a également pour objet un peptide et/ou un fragment de peptide, caractérisé en ce qu'il est codé par une séquence nucléotidique telle que définie ci-dessus et en ce qu'il présente une activité de récepteur ss3-adrénergique. Une activité de récepteur ss3-adrénergique est celle définie dans la Demande de Brevet français n 89 00918, à savoir que, lorsque le fragment est exposé à la surface d'une cellule, il est capable de participer à l'activation de l'adénylate cyclase en présence d'un des agonistes suivants : BRL 28410, BRL 37344, CGP 12177 et (l)-isoprotérénol ; soit il est susceptible d'être reconnu par des anticorps qui ne reconnaissent ni le récepteur adrénergique ssl, ni le récepteur adrénergique ss2 ; soit il est susceptible de générer des anticorps qui ne reconnaissent ni le récepteur ssl, ni le récepteur ss2. Selon un mode de réalisation avantageux dudit peptide, il comprend 388 amino-acides et présente la séquence en amino-acides de formule II suivante Met-Ala-Pro-Trp-Pro-His -Arg-Asn-Gly-Ser-Leu-Ala-Leu-Trp- Ser-Asp-Ala-Pro-Thr-Leu-Asp-Pro-Ser-Ala-Ala-Asn-Thr-Ser Gly-Leu-Pro-Gly-Val-Pro-Trp-Ala-Ala-Ala-Leu-Ala-Gly-Ala- Leu-Leu-Ala-Leu-Ala-Thr-Val-Gly-Gly-Asn-Leu-Leu-Val-Ile- Ile-Ala-Ile-Ala-Arg-Thr-Pro-Arg-Leu-Gln-Thr-Ile-Thr-Asn Val-Phe-Val-Thr-Ser-Leu-Ala-Ala-Ala-Asp-Leu-Val-Val-Gly- Leu-Leu-Val-Met-Pro-Pro-Gly-Ala-Thr-Leu-Ala-Leu-Thr-Gly- His-Trp-Pro-Leu-Gly-Glu-Thr-Gly-Cys-Glu-Leu-Trp-Thr-Ser- Val-Asp-Val-Leu-Cys-Val-Thr-Ala-Ser-Ile-Glu-Thr-Leu-Cys- Ala-Leu-Ala-Val-Asp-Arg-Tyr-Leu-Ala-Val-Thr-Asn-Pro-Leu- Arg-Tyr-Gly-Thr-Leu-Val-Thr-Lys-Arg-Arg-Ala-Arg-Ala-Ala Val -Val -Leu-Val -Trp -Ile-Val -Ser-Ala-Ala-Val -Ser-Phe-Ala- Pro-Ile-Met-Ser-Gln-Trp-Trp-Arg-Val-Gly-Ala-Asp-Ala-Glu- Ala-Gln-Glu-Cys-His-Ser-Asn-Pro-Arg-Cys-Cys-Ser-Phe-Ala- Ser-Asn-Met-Pro-Tyr-Ala-Leu-Leu-Ser-Ser-Ser-Val-Ser-Phe Tyr-Leu-Pro-Leu-Leu-Val-Met-Leu-Phe-Val-Tyr-Ala-Arg-Val- Phe-Val-Val-Ala-Lys-Arg-Gln-Arg-His-Leu-Leu-Arg-Arg-Glu- Leu-GLy-Arg-Phe-Ser-Pro-Glu-Glu-Ser-Pro-Pro-Ser-Pro-Ser Arg-Ser-Pro-Ser-Pro-Ala-Thr-Gly-Gly-Thr-Pro-Ala-Ala-Pro- Asp-Gly-Val-Pro-Pro-Cys -Gly-Arg-Arg-Pro-Ala-Arg-lieu-lieu- Pro-Leu-Arg-Glu-His-Arg-Ala-Leu-Arg-Thr-Leu-Gly-Leu-Ile- Met-Gly-Ile-Phe-Ser-Leu-Cys-Trp-Leu-Pro-Phe-Phe-Leu-Ala- Asn-Val-Leu-Arg-Ala-Leu-Ala-Gly-Pro-Ser-Leu-Val-Pro-Ser- Gly-Val-Phe-Ile-Ala-lieu-Asn-Trp-lieu-Gly-Tvr-Ala-Asn-Ser- Ala-Phe-Asn-Pro-Val -Ile-Tyr-Cys -Arg-Ser-Pro-Asp-Phe-Arg- Asp-Ala-Phe-Arg-Arg-Leu-Leu-Cys-Ser-Tyr-Gly-Gly-Arg-Gly Pro-Glu-Glu-Pro-Arg-Ala-Val-Thr-Phe-Pro-Ala-Ser-Pro-Val- Glu-Ala-Arg-Gln-Ser-Pro-Pro-Leu-Asn-Arg (Il), lequel peptide présente 82 % d'homologie avec le peptide ss3 humain (récepteur ss3 humain). Ce peptide est dénommé ci-après récepteur ss3- adrénergique murin (RA-MuD3). I1 n'était pas évident que les murins possédassent un récepteur ss3-adrénergique et que ce dernier soit, de plus, suffisamment homologue au récepteur ss3- adrénergique humain, pour permettre son utilisation comme modèle d'étude générale du récepteur ss3-adrénergique. Le RA-ss3 murin (RA-Muss3) présente, en effet, un certain nombre d'avantages - il est particulièrement bien adapté en tant que modèle du récepteur ss3-adrénergique, en particulier pour des études physiologiques, qui ne peuvent pas être réalisées avec le récepteur humain - il permet d'étudier la régulation de l'expression du récepteur ss3-adrénergique, dans différentes conditions physiologiques (exposition au froid ou à des ligands ss-adrénergiques), qui peuvent modifier l'activité lipolytique et/ou thermogénique, car le récepteur ss3-adrénergique intervient dans les maladies telles que le diabète et/ou l'obésité, dans la mesure où il est exprimé dans des tissus qui jouent un rôle important dans le métabolisme (tissus adipeux, muscle squelettique notamment) - il permet en outre d'analyser l'expression du récepteur ss3-adrénergique au cours du développement embryonnaire. L'invention comprend également les peptides variants de ceux définis ci-dessus, qui comportent certaines mutations, sans que les peptides ne perdent les propriétés de récepteur ss3-adrénergique. Parmi ces variants, on peut mentionner ceux qui sont reconnus par des anticorps reconnaissant les régions transmembranaires, ainsi que ceux qui sont reconnus par des anticorps reconnaissant les régions autres que les régions transmembranaires. La présente invention a également pour objet des fragments ou des combinaisons de fragments du RA Mués3, conforme à l'invention et notamment - un fragment de 25 amino-acides, correspondant à la région transmembranaire TMI de la séquence de formule Il - un fragment de 30 aminoacides, correspondant au fragment COOH terminal de la séquence de formule II. Lesdits fragments sont avantageusement obtenus par synthèse, notamment par la méthode de Merrifield. La présente invention a également pour objet un vecteur recombinant de clonage et/ou d'expression, caractérisé en ce qu'il comprend une séquence nucléotidique conforme à l'invention. On entend au sens de la présente invention, par vecteur recombinant, aussi bien un plasmide, un cosmide qu'un phage. Selon un mode de réalisation avantageux dudit vecteur, il est constitué par un vecteur recombinant approprié comprenant en particulier une origine de réplication dans un microorganisme hôte approprié, notamment une bactérie ou une cellule eucaryote, au moins un gène dont l'expression permet la sélection soit des bactéries, soit des cellules eucaryotes ayant reçu ledit vecteur, une séquence régulatrice appropriée, notamment un promoteur permettant l'expression des gènes dans lesdites bactéries ou cellules eucaryotes, et dans lequel est insérée une séquence nucléotidique ou un fragment de séquence tels que définis ci-dessus, lequel vecteur est un vecteur d'expression d'un peptide, d'un fragment de peptide ou d'une combinaison de fragments de peptides ayant une activité de récepteur ss3-adrénergique murin. Selon une disposition avantageuse de ce mode de réalisation, ledit vecteur d'expression est constitué successivement d'une origine de réplication approprié, d'un gène de résistance à l'ampicilline, du promoteur viral SV40, d'une séquence nucléotidique conforme à l'invention codant pour un peptide ayant une activité de récepteur ss3-adrénergique murin, d'un site de polyadénylation dérivé du virus de l'hépatite B (HBsAg) et du gène codant pour la dihydrofolate réductase (DHFR), enzyme qui permet la survie des cellules dans un milieu dépourvu en glycine, hypoxanthine et thymidine. Un tel plasmide a été dénommé pSTH-Moss3 par les Inventeurs et a été déposé sous le n I-1026 en date du 14 janvier 1991 auprès de la Collection Nationale de Cultures de Microorganismes tenue par 1'INSTITUT PASTEUR. La présente invention a également pour objet une cellule hôte appropriée, obtenue par transformation génétique, caractérisée en ce qu'elle est transformée par un vecteur d'expression conforme à l'invention. Une telle cellule est capable d'exprimer un peptide, d'origine murine, ayant une activité de récepteur '33 -adrénergique. Selon un mode de réalisation avantageux, la cellule hôte est notamment constituée par les cellules de la lignée CHO (chineuse Hamster Ovary). Un autre des microorganismes utilisés peut être constitué par une bactérie, notamment Escherîchia coli. La présente invention a également pour objet un processus d'expression d'un peptide conforme à l'invention, caractérisé en ce que la cellule hôte, résultant de la transformation par un vecteur contenant une séquence nucléotidique ou un fragment de celle-ci, codant pour un peptide d'origine murine ayant une activité de récepteur ss3-adrénergique ou un fragment de celui-ci, est cultivée de manière à produire et à transporter ledit peptide exprimé vers la membrane, de telle sorte que les séquences transmembranaires dudit récepteur ss3 soient exposées à la surface de la membrane de l'hôte cellulaire transformé. Dans le cas de l'expression en cellules eucaryotes, les éléments de régulation peuvent comporter le promoteur endogène des récepteurs adrénergiques ou des promoteurs viraux tels que ceux des virus SV40 ou du virus du sarcome de Roux (RSV). Dans le cas de l'expression dans E. coli, les éléments de régulation peuvent comporter le promoteur de l'opéron lactose ou de l'opéron tryptophane. La présente invention a également pour objet un modèle d'étude des récepteurs ss3-adrénergiques, caractérisé en ce qu'il est constitué par des cellules hôtes conformes à l'invention, c'est-à-dire exprimant un récepteur ss3-adrénergique murin à la surface de leur membrane cellulaire. Un tel modèle permet l'étude, d'un point de vue pharmacologique, des récepteurs ss3-adrénergiques murins, notamment en permettant l'identification des ligands ss adrénergiques plus affins pour le récepteur ss3 adrénergique ou plus sélectifs par rapport aux récepteurs '31 et ss2 et ainsi la mise au point des médicaments actifs dans des maladies telles que le diabète et/ou l'obésité. L'invention a également pour objet un procédé de détection de la capacité d'une substance à se comporter comme ligand vis-à-vis d'un peptide conforme à l'invention, lequel procédé comprend - la mise en contact de ladite substance avec une cellule hôte préalablement transformée par un vecteur d'expression conforme à l'invention, laquelle cellule hôte exprime ledit peptide murin (RAss3 murin) , le cas échéant après induction physique ou chimique appropriée, et laquelle mise en contact est réalisée dans des conditions permettant la formation d'une liaison entre l'un au moins des sites spécifiques et ladite substance s'il y a lieu ; et - la détection de la formation éventuelle d'un complexe du type ligand-peptide. La présente invention a, de plus, pour objet une méthode de production de souris transgéniques surexprimant le récepteur ss3-adrénergique, laquelle méthode comprend l'introduction de plusieurs copies d'un segment comprenant au moins la séquence de formule I associée à un promoteur convenable, dans les cellules d'un embryon de souris à un stade précoce. Selon un mode de mise en oeuvre avantageux de ladite méthode, le promoteur est le promoteur du gène RA Mués3, notamment de façon à. respecter sa répartition tissulaire d'origine. Selon un autre mode de mise en oeuvre avantageux de ladite méthode, le promoteur est un promoteur d'un gène exprimé spécifiquement dans un tissu, notamment le promoteur de l'actine musculaire. La présente invention a, de plus, pour objet des souris transgéniques, caractérisées en ce qu'elles sont obtenues par la méthode de production de souris transgéniques telle que définie ci-dessus. La présente invention a également pour objet une méthode de production de souris recombinantes, n'exprimant plus le récepteur ss3-adrénergique, caractérisée en ce que - l'on réalise, dans la séquence de formule I, conforme à l'invention, une mutation convenable qui inhibe l'expression du gène codant pour le récepteur ss3- adrénergique murin - l'on introduit ladite séquence I modifiée dans un segment de 1'ADN génomique de souris, associé à un marqueur approprié, de manière à obtenir une séquence marquée M, contenant la séquence de formule I modifiée - l'on intègre ladite séquence M, in vitro, dans les cellules souches de lignées germinales d'embryon de souris ; puis - l'on réinjecte lesdites cellules souches à une souris ; et après recombinaison homologue, - l'on obtient à la génération F2 des souris recombinées homozygotes, reconnaissables à la présence du marqueur. Un protocole de souris recombinantes est, par exemple, décrit dans Nature, 1988, 336, 348-352. Selon un mode de mise en oeuvre avantageux de ladite méthode, ledit segment d'ADN génomique de souris comprend au plus 14 Kbases. Selon une disposition avantageuse de ce mode de mise en oeuvre, lorsque ledit fragment est de 14 Kbases, il comprend notamment les sites de restriction suivants : 3 sites SphI, 2 sites BamHI, 2 sites HindIII, 4 sites XbaI, 4 sites Saci, 1 site KpnI, 1 site SmaI, 2 sites BglII, 2 sites PvuII, 1 site PstI et 1 site EcoRI. Selon un autre mode de mise en oeuvre avantageux de ladite méthode, la séquence de formule I mutée est comprise entre un site BglII et un site BamHI du segment d'ADN génomique de souris. La présente invention a, de plus, pour objet des souris recombinantes, caractérisées en ce qu'elles sont obtenues par la méthode de production de souris recombinantes telle que définie ci-dessus Les souris transgéniques et les souris recombinantes telles que définies ci-dessus, sont un modèle d'étude particulièrement avantageux, d'un point de vue physiologique, des récepteurs ss3-adrénergiques. La présente invention a, en outre, pour objet un procédé pour l'étude de l'affinité d'un polypeptide conforme à l'invention pour un ou plusieurs ligands déterminés, lequel procédé comprend - la transformation d'une cellule hôte appropriée par un vecteur d'expression conforme à l'invention - la culture de la cellule hôte transformée, dans des conditions permettant l'expression du récepteur 53 codée par la séquence nucléotidique, et le transfert du récepteur ss3 exprimé vers la membrane de ladite cellule, de sorte que les séquences transmembranaires du récepteur 53 soient exposées à la surface de la cellule hôte transformée - la mise en contact de ladite cellule avec les ligands déterminés ; et - la détection d'une réaction affine entre ladite cellule transformée et lesdits ligands déterminés. L'invention a, en? outre, pour objet un kit pour la détection de l'affinité éventuelle d'un ligand pour un peptide conforme à l'invention, lequel kit comprend - une culture de cellules hôtes transformées par un vecteur d'expression conforme à l'invention - éventuellement, si nécessaire, des moyens physiques ou chimiques pour induire l'expression d'un peptide (récepteur 53 murin ou un fragment de celui-ci) codé par une séquence nucléotidique conforme à l'invention, contenue dans un vecteur dont le promoteur est inductible - un ou plusieurs ligands témoins ayant des affinités déterminées pour ledit peptide ; et - des moyens physiques ou chimiques pour la caractérisation de l'activité biologique du peptide exprimé. L'invention a également pour objet des anticorps dirigés de façon spécifique contre l'un des peptides conformes à l'invention, ces anticorps étant tels qu'ils ne reconnaissent ni le récepteur adrénergique 51, ni le récepteur adrénergique 52. Selon un mode de réalisation avantageux, lesdits anticorps sont des anticorps polyclonaux. Selon un mode de réalisation avantageux, lesdits anticorps sont des anticorps monoclonaux. On prépare les anticorps monoclonaux par fusion cellulaire entre des cellules de myélome et des cellules spléniques de souris immunisées, selon les procédés classiques. De manière inattendue, le récepteur 53- adrénergique murin permet la réalisation de toutes les applications précitées. Outre les dispositions qui précèdent, l'invention comprend encore d'autres dispositions, qui ressortiront de la description qui va suivre, qui se réfère à des exemples de mise en oeuvre du procédé objet de la présente invention, avec référence aux dessins annexés, dans lesquels - la figure 1 représente la carte de restriction du clone MB1 qui contient le gène 3-adrénergique murin et comprend 14 Kb - la figure 2 représente les sites uniques de restriction de la séquence de formule I (gène murin 3) - la figure 3 est une comparaison des régions codantes des gènes ss3 humain et murin - la figure 4 est une comparaison des récepteurs ss3 humain et murin - la figure 5 est une comparaison des récepteurs B1, 52 et ss3 humains avec le récepteur ss3 murin - la figure 6 représente la détection par autoradiographie de 1'ADN génomique de souris, s'hybridant avec des sondes spécifiques du gène ss3- adrénergique - la figure 7 est une représentation du plasmide pSTH-Mo53. I1 doit être bien entendu, toutefois, que ces exemples sont donnés uniquement à titre d'illustration de l'objet de l'invention, dont ils ne constituent en aucune manière une limitation. ExemPle : Isolement et identification du gène B3-adr- énergique murin. Le gène ss3 murin a été isolé d'une banque d'ADN génomique de souris de la lignée NIH-3T3 construite dans le phage B-FixII, en utilisant comme sonde un fragment d'ADN de 1034 pb (sonde Hués3) contenant la totalité du gène ss3-adrénergique humain précédemment isolé dans le laboratoire (EMORINE et al., Science, 245, 1118-1121, 1989). Après hybridation avec la sonde radiomarquée, les filtres sont lavés, et exposés une nuit sur film d'autoradiographie. 24 signaux d'hybridation ont été observés, dont 18 se sont par la suite révélés être de faux positifs.Les 6 clones restants (MB1, MB2, MB3, MB4, MB9, MB12) ont été purifiés par 4 sous-clonages successifs suivis d'une hybridation avec la sonde Hués3 (voir Demande française 89 00918). Pour identifier le(s) clone(s) contenant le gène ss3-adrénergique murin, deux méthodes ont été utili sees. : l'hybridation avec d'autres sondes ss-adréner- giques, et l'amplification par PCR. L'ADN des 9 clones a été préparé, coupé par des endonucléases de restriction, puis hybridé avec plusieurs sondes dérivées des gènes ss- adrénergiques, comme visible sur le Tableau I ci-après. TABLEAU I SONDES Huss3 Hussl Huss2 i3ss3 3'ssl i3ss2 Gène ss1 humain ++ +++ ++ - + ss2 humain + ++ +++ - - + ss3 humain +++ ++ + + Clone MB1 +++ + - + - MB2 +++ + - + - MB3 +++ + - + - MB4 +++ + - + - MB9 +++ + - + - - MB12 + - - - - Les sondes utilisées dérivent toutes des gènes ss-adrénergiques humains, pl, ss2 ou ss3, telles que décrites dans la Demande de Brevet français n 89 00918. Les sondes Huss1, Huss2 et Huss3 (environ 1,2 Kb) contiennent respectivement la totalité des régions codantes des gènes ss1, ss2 et ss3. Comme l'indique la partie supérieure du Tableau I, chacune des sondes hybride avec les trois gènes humains. Les sondes 3'ss1, i3ss2 et i3ss3 (environ 200 à 300 pb) correspondent respectivement à la partie carboxyterminale du sslAR, et à la troisième boucle intracellulaire des ss2AR et ss3AR. Ces sondes dérivent de régions très divergentes entre les gènes ss1, ss2 et ss3, et sont donc spécifiques : comme l'indique la partie supérieure du Tableau I, chacune des sondes n'hybride qu'avec le gène correspondant. I1 ressort de ce qui précède, que les clones MB1, MB2, MB3, MB4 et MB9 hybrident très fortement avec la sonde Huss3, et hybrident également avec la sonde i3ss3. Le clone MB12 hybride très faiblement avec la sonde Huss3 de départ, et pas du tout avec la sonde spécifique i3ss3. D'autre part, la comparaison des profils de digestion de ces six clones avec plusieurs enzymes de restriction montre que MB1, MB4, MB9 d'une part, et MB2, MB3 d'autre part, sont identiques, et que ces deux groupes de clones sont chevauchants. Les clones MB1, MB4 et MB9 sont les plus intéressants car la région hybridant avec la sonde est située à peu près au milieu du fragment d'ADN cloné. Pour montrer que MB1 contient bien le gène ss3- adrénergique murin, des expériences d'amplification par PCR ont été réalisées en utilisant comme amorces, soit des oligonucléotides "dégénérés", situés dans les domaines les plus conservés entre les différents gènes ss- adrénergiques, soit des oligonucléotides "spécifiques" du gène ss3-adrénergique humain, dérivés des séquences les plus divergentes entre les trois gènes. Dans les deux cas, un produit d'amplification de la taille attendue a pu être obtenu en utilisant comme matrice 1'ADN du clone MB1 . De ces deux expériences, hybridation et amplification, il a pu être déduit que les clones de la famille MB1 contiennent le gène 53-adrénergique murin. Exemple 2 : Localisation du gène B3-adrénergique dans le clone MB1. L'ADN du clone MB1, qui comprend 14 Kb, a été digéré par douze enzymes de restriction, soit indépendamment, soit deux à deux. Les; fragments résultant ont été déposés sur gel d'agarose, transférés sur membrane de nylon, et hybridés avec la sonde Hués3. Après lavage et exposition sur film d'autoradiographie, les fragments hybridant avec la sonde ont pu être identifiés, et la carte, de restriction du clone MB1 a été établie (figure 1) Le plus petit fragment d'ADN hybridant avec la sonde Hués3 est un fragment d'environ 1,7 Kb délimité par les sites SacI et BamHI. C'est donc dans ce fragment qu'est localisé le gène ss3-adrénergique murin. ExemDle 3 : Séquençage du gène '33-adrénergique murin. On a séquencé le fragment d'ADN d'environ 2 Kb délimité par les sites des enzymes BglII et BamHI (voir figure 1). Ce fragment d'ADN a été purifié à partir de l'ADN du clone MB1, et sous-cloné dans le site BamHI du vecteur M13mpl8. Les clones M13 ayant intégré le fragment d'ADN dans les deux orientations opposées ont été identifiés (clones MBlBBl et MB1BB2). L'ADN de ces deux clones M13 a été préparé et délété avec l'exonucléase III (ExoIII). Plusieurs délétants ont été isolés, leur ADN simple brin a été préparé et séquencé par la méthode de Sanger. La séquence nucléotidique du gène ss3 de souris (1180 bp) et des régions non codantes (555 bp en 5' et 186 bp en 3' du gène) est représentée par la formule I. Les sites de restriction contenus dans ce fragment de 1920 bp sont positionnés sur la figure 2. La comparaison des régions codantes des gènes ss3 humain et murin indique une conservation de 83 % en nucléotides (figure 3). Le gène ss3 murin ne contient pas d'intron, et code pour un polypeptide de 388 acides aminés qui présente 82 % d'homologie avec le polypeptide ss3 humain (figure 4). Cette homologie est principalement concentrée dans les régions transmembranaires ("TM"), à l'exception de la TM1 qui chez la souris est délétée de 3 résidus par rapport au récepteur humain.De plus, les 30 résidus C-terminaux du ss3 de souris ne présentent pas d'homologie avec la queue C-terminale du récepteur ss3 humain (figure 5). Le RA-ss3 murin comprend un résidu tyrosine en position 360 de la séquence en acides aminés, qui n'existe pas dans la séquence du RA-B3 humain (figure 5). Exemple 4 : Préparation de sondes spécifiques du gène ss3- adrénergique murin. Trois fragments d'ADN ont été purifiés dans le but d'obtenir une sonde spécifique du gène ss3-murin. La sonde "Al9" correspond au fragment BgIII BamHI de 2 Kb qui a été séquencé. Ce fragment a été purifié par migration sur gel d'agarose, électroélution et passage sur une colonne échangeuse d'ions (NACS). La sonde "A20" correspond au produit d'amplification obtenu par PCR à partir du gène B3-murin en utilisant comme amorces les oligonucléotides "dégénérés" (5' -AAGCTTGT/CGTG/CACG/CGCCAGCATC/TGAG/AACCCTGTG-3' et 5' -GTCGACAAGAAGGGCAGC/ACAGCAGAGG/C/AGTGAA-3' dans un milieu réactionnel comprenant : 100 mM Tris-HCl pH 8,4, 30 mM MgC12, 0,5 % Tween 20, 0,25 % Nonidet P40, 5 % Formamide et 10 % diméthylsulfoxide. Le fragment d'ADN obtenu (environ 600 pb) comprend la partie du gène contenue entre les régions transmembranaires TM3 et TM6. Après amplification, les extrémités du fragment A20 ont été remplies avec le fragment "Klenow" de la polymérase I. La sonde a alors été purifiée par migration sur gel de polyacrylamide, électroélution, et passage sur une colonne échangeuse d'ions. La sonde "A21" correspond au produit d'amplification obtenu par PCR à partir du gène ss3 murin en utilisant comme amorces des oligonucléotides "spécifiques" du gène ss3 humain (5'-GCATGCTCCGTGGCCTCACGAGAA-3' et 5' CTGCAGGAGGAGGACAGCAGCA-3') dans un milieu réactionnel comprenant 670 mM Tris-HCl pH 8,4, 67 mM MgC12, 1 mg/ml gélatine, 67 RM EDTA, 100 mM ss-mercaptoéthanol, 160 mM (NH4)2SO4, 5 % Formamide et 10 % diméthylsulfoxide. Le fragment d'ADN obtenu (environ 300 pb) comprend la région amino-terminale du gène, allant du codon d'initiation de la traduction jusqu'à la fin du domaine TM2. La sonde A21 a été purifiée de la même façon que la sonde A20. Les trois sondes ainsi préparées ont été radiomarquées et utilisées dans des expériences d'hybridation d'ADN génomique (Southern blot) pour estimer leur spécificité vis-à-vis du gène 53. Des ADN génomiques préparés à partir de foie de souris BALB/c, par digestion par une enzyme de restriction (BglII : traces 1 de la figure 6; BamHI : traces 2 de la figure 6) ou à partir de cellules A431 (lignée épidermoïde humaine), par digestion par BamHI (traces 3 de la figure 6) ; les fragments obtenus ont été séparés sur gel d'agarose puis transférés sur membrane de nylon. La membrane a ensuite été hybridée avec une des sondes radiomarquées (au9 : zone A, A20 : zone B ou A21 : zone C de la figure 6), lavée à faible stringence puis autoradiographiée.Chacune de ces sondes détecte une bande unique sur l'ADN génomique de souris BALB/c (figure 6). Dans chacun des cas, la taille du fragment hybridé (3,6 Kb avec l'enzyme BglII et 6,9 Kb avec l'enzyme BamHI) correspond à celle du gène ss3-adrénergique murin qui a été cloné. Ces résultats indiquent que chacune de ces trois sondes détecte spécifiquement le gène ss3-adréner- gique de souris. La présence d'une bande unique dans 1'ADN total de souris indique qu'il n'y a pas, dans le génome murin, d'autre séquence hautement homologue au gène ss3-adrénergique. On peut en conclure qu'il existe chez la souris une seule copie du gène RA-ss3. Exemple : Construction d'un vecteur pour l'expression du RA-ss3 murin. L'étude des propriétés pharmacologiques du produit du gène ss3 murin exige qu'il soit exprimé à la surface de cellules eucaryotes, qui possèdent tous les éléments nécessaires à la transduction du signal. Pour pouvoir directement comparer les propriétés des récepteurs ss3-AR murin et humain, on a choisi d'exprimer le gène ss3 de souris dans les cellules de la lignée CHO (Chinese Hamster Ovary), déjà utilisées pour analyser le récepteur ss3-AR humain (voir Demande de Brevet français n 89 00918). Dans ce système (figure 7), la région codante du gène à analyser est insérée entre le promoteur viral SV40 (ce promoteur fort permet d'obtenir un haut niveau d'expression) et un site de polyadénylation dérivé du virus de l'hépatite B (HBsAg), dans un plasmide comprenant également le gène codant pour la dihydrofolate réductase (DHFR, enzyme qui permet la survie des cellules dans un milieu dépourvu de glycine, d'hypoxanthine et de thymidine). La carte de restriction du fragment de 2 Kb qui a été séquencé (figure 2) indique la présence d'un site de coupure par l'enzyme NarI à la position 555, soit 15 nucléotides en amont de la région codant du gène ss3 de souris. L'ADN du clone MBlBBl (2 Kb insérés dans M13mpl8) a été digéré avec les enzymes NarI et BamHI, pour libérer le fragment de 1360 pb contenant la région codante du gène ss3 et une partie de la région 3' non traduite. Ce fragment d'ADN a été purifié, puis inséré dans le vecteur d'expression aux sites de coupure des enzymes HindIII et BamHI (figure 7). Comme les extrémités générées par les enzymes NarI et HindIII ne sont pas compatibles, on a pris soin, au cours de la digestion enzymatique, de traiter les extrémités NarI de l'insert d'une part, et les extrémités HindIII du vecteur d'autre part, avec le fragment "Klenow" de la polymérase I, de façon à obtenir des bouts francs. On a ainsi obtenu le plasmide recombinant PSTH-Moss3 représenté sur la figure 7. Ainsi que cela ressort de ce qui précède, l'invention ne se limite nullement à ceux de ses modes de mise en oeuvre, de réalisation et d'application qui viennent d'être décrits de façon plus explicite ; elle en embrasse au contraire toutes les variantes qui peuvent venir à l'esprit du technicien en la matière, sans s'écarter du cadre, ni de la portée, de la présente invention. REVENDICATIONS 1 ) Séquence d'acide nucléique, caractérisée en ce qu'elle comprend le gène murin codant pour un peptide ayant une activité de récepteur ss3-adrénergique. 2 ) Séquence selon la revendication 1, caractérisée en ce qu'elle comporte 1920 paires de bases et comprend la séquence en nucléotides de formule I ciaprès GATCTGTAATCCCAGCACTGGGGAGGTTGAGGCAGMGGATCTGGAGGTCCAGACCGTCTGGGCMCATATAGAAGACTATCTCAAACGTMGATAC 100 CTTACCGAGACGATCCAACCACAAGACCCCCTATGTTCCATCCTTTCCCTTGTTCGCTTTTCTTTTCCTTTGTTCTCGATCGTTCCCTTCCTTCTTCCC 200 TAAAGGATAGGGTGCGGGGGTTTCTCTTCTTTGCAGGGTTGCCTCAGGTTCTGCCAGGAAGGAGCTGCTGAGCTCCAGGAAACCGGTGCTGAGGGAGTGT 300 CAAGACAGGACGCCCCTCTCCACCCTCCAATTCCCACCACACCCCTCTCTTGTCACTATTGCACCCTGTTCCTTTAAAACCAGCGACTCCTCCCCCCAAC 400 TAGGGTGTACATGGGGGGTGAGATGGAGGGAAGCTGACAGACTTACCCCAGCAATTAGGGAAGATGGCCCAGGCTGGAGAGTCGCTCCCAAGCCCTACT500 GTCCCCTTCCCTAAGCCAGCGGGTCTGGGGAGGAGGGGGMCCTTCCCACCCCAGGCGCCACACGAG ATG CGT CCC TCC CCT CAC AGA AAC 591 GGC TCT CTC CGT TTG TGG TCC GAC GCC CCT ACC CTC GAC CCC AGT GCA GCC MC ACC AGT GGC TTG CCA GGA GTA 666 CCA TCG GCA GCG GCA TTC CGT GGC GCA TTC CTG CCC CTG GCC ACC CTC GGA CCG MC GTC CTG GTA ATC ATA CGC 741 ATC GCC CGC ACC CCC AGA CTA CAG ACC ATA ACC MC GTG TTC CTC ACT TCA CTC CGC GCA GCT GAC TTC GTA CTC 816 CGA CTC CTC GTA ATG CCA CCA GGG GCC ACA TTG CCC CTG ACT GGC CAT TCG CCC TTC GGC GAA ACT GGT TGC CAA 891 CTC TCG ACG TCA GTC GAC CTC CTC TCT GTA ACT CGT AGC ATC GAG ACC TTC TCG GCC CTC CCT GTG GAC CGC TAC 966 CTA CGT GTC ACC MC CCT TTC CGT TAC CCC ACG CTC GTT ACC AAG CGC CGC GCC CGC CCC CGA GTT GTC CTC GTG 1041 TGG ATC GTG TCC GCT GCC GTG TCC TTT CCC CCC ATC ATG AGC CAG TGG TGG CGT GTA GGG GCA GAT GCC GAG GCA 1116 CAG GAA TGC CAC TCC MT CCC CGC TGC TGT TCC TTT GCC TCC AAC ATG CCC TAT CCC CTC CTC TCC TCC TCG GTC 1191 TCC TTC TAC CTT CCC CTC CTT GTG ATG CTC TTC GTC TAT GCT CGA GTG TTC GTT GTG GCT AAG CGC CM CGC CAT 1266 TTC CTG CGC CGC GAA CTG CCC CGC TTC CG CCC GAG GAG TCT CCC CCC TCT CCC TCG CGC TGT CCC TCC CCT GCC 1341 AGA CCC GGC ACA CCC CCC CGA CCC GAT GGA GTG CCC CCC TGC CCC CGC CGC CCT CCC CGC CTC CTG CCA CTC CCC 1416 GM CAC CGC CCC CTG CGC ACC TTA GGT CTC ATT ATG CCC ATC TTC TCT CTG TGC TGG CTG CCC TTC TTC CTC GCC 1491 MC CTC CTC CGC GCA CTC CCC CCC CCC TCT CTA GTT CCC AGC GGA GTT TTC ATC CGC CTC MC TGG CTG GCC TAT 1566 GCC MC TCC GCC TTC MC CCC GTC ATC TAC TGC CGC AGC CCC GAC TTT CGC GAC GCC TTC CGT CGT CTT CTG TGT 1641 AGC TAC GGT GGC CGT GGA CCC GAG GAG CCA CGC GCA GTC ACC TTC CCA GCC AGC CCT GTT GAA GCC AGG CAG AGT 1716 CCA CCC CTC MC AGG TAG CGOAGACGACCOOCCGACCGGAGTCTCTGGGTCCCGACGTCTCTCTCTGTATTTTTGAOTTTGGAGATTOGGCCAG 1810 GGGMGATGTAGATGGGGGTGCGGTGTGTGTGTGGGTGGGGGGTGGCCTTTGTCTTGAGAGGACAGMMGAGGTAGGMCTAAMCGGGCCCTTTCTCT 1910 TCTTGGATCC 1920 (I) ainsi que les séquences dérivées de celle-ci et les fragments de ladite séquence et des séquences dérivées. 3 ) Séquence selon la revendication 2, caractérisée en ce qu'elle comprend notamment les sites de restriction uniques suivants AlwN I, Sac I, Stu I, Dra I, Mse I, Bbe I, Nar I, Xcm I, NCo I, BspM I, Afl III, Pvu I, Nhe I, BstE II, BspH I, Bsm I, Nsp7524 I, NspH I, Xho I, Sac II, Eag I, Nae I, PaeR7 I, EcoN I, Fsp I, Bbv II, Nru I, Drd I, BamH I. 4 ) Fragment de la séquence selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisé en ce qu'il est constitué d'un segment de 1164 paires de bases nucléotidiques, qui correspond aux nucléotides 568-1731 de la séquence de formule I. 5-) Fragment de la séquence selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisé en ce qu'il est constitué d'un segment de 1360 paires de bases contenant la région codante du gène ss3 murin et une partie de la région 3' non traduite. 6 ) Fragment de la séquence selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisé en ce qu'il est constitué d'un segment de 280 paires de bases nucléotidiques, qui correspond aux nucléotides 1640-1920 de la séquence de formule I. 7 ) Fragment de la séquence selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisé en ce qu'il est constitué d'un segment de 608 paires de bases nucléotidiques, situé entre les régions transmembranaires TM3 et TM6 et qui correspond aux nucléotides 895-1503 de la séquence de formule I. 8 ) Fragment de la séquence selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, caractérisé en ce qu'il est constitué d'un segment de 297 paires de bases nucléotidiques, allant du codon d'initiation de la traduction jusqu'à la fin du domaine TM2 et qui correspond aux nucléotides 567-864 (région du gène codant pour la partie amino-terminale du peptide) de la séquence de formule I. 9 ) Sondes nucléotidiques, caractérisées en ce qu'elles s'hybrident avec les séquences nucléotidiques selon l'une quelconque des revendications 1 à 8 mais ne s'hybrident pas avec les gènes codant pour les récepteurs B1 et ss2 adrénergiques, ni avec 1'ARN messager desdits récepteurs '31 et ss2 adrénergiques, et en ce qu'elles sont éventuellement marquées à l'aide d'un marqueur tel qu'un isotope radioactif, une enzyme appropriée ou toute autre substance non radioactive appropriée. 10-) Sonde selon la revendication 9, caractérisée en ce que sa séquence est homologue ou complémentaire de celle d'un segment d'au moins 10 paires de bases de la séquence I. 11') Sonde selon la revendication 9 ou la revendication 10, caractérisée en ce qu'elle comprend un fragment selon l'une quelconque des revendications 1 à 8. 12-) Peptide et/ou fragment de celui-ci, caractérisé en ce qu'il est codé par une séquence nucléotidique selon l'une quelconque des revendications 1 à 5, et en ce qu'il présente une activité de récepteur ss3- adrénergique, à savoir que, lorsque le fragment est exposé à la surface d'une cellule, il est capable de participer à l'activation de l'adénylate cyclase en présence d'un des agonistes suivants : BRL 28410, BRL 37344, CGP12177 et (l)-isoprotérénol ; soit il est susceptible d'être reconnu par des anticorps qui ne reconnaissent ni le récepteur adrénergique ssl, ni le récepteur adrénergique ss2 ; soit il est susceptible de générer des anticorps qui ne reconnaissent ni le récepteur pl, ni le récepteur ss2. 13-) Peptide selon la revendication 12, caractérisé en ce qu'il comprend 388 amino-acides et présente la séquence en amino-acides de formule II suivante Met-Ala-Pro-Trp-Pro-His-Arg-Asn-Gly-Ser-lieu-Ala-lieu-Trp- Ser-Asp-Ala-Pro-Thr-Leu-Asp-Pro-Ser-Ala-Ala-Asn-Thr-Ser Gly-Leu-Pro-Gly-Val-Pro-Trp-Ala-Ala-Ala-Leu-Ala-Gly-Ala- Leu-Leu-Ala-Leu-Ala-Thr-Val-Gly-Gly-Asn-Leu-Leu-Val-Ile- Ile-Ala-Ile-Ala-Arg-Thr-Pro-Arg-Leu-Gln-Thr-Ile-Thr-Asn Val-Phe-Val-Thr-Ser-Leu-Ala-Ala-Ala-Asp-Leu-Val-Val-Gly- Leu-Leu-Val-Met-Pro-Pro-Gly-Ala-Thr-Leu-Ala-Leu-Thr-Gly- His-Trp-Pro-Leu-Gly-Glu-Thr-Gly-Cys-Glu-Leu-Trp-Thr-Ser- Val-Asp-Val-Leu-Cys-Val-Thr-Ala-Ser-Ile-Glu-Thr-Leu-Cys- Ala-Leu-Ala-Val-Asp-Arg-Tyr-Leu-Ala-Val-Thr-Asn-Pro-Leu- Arg-Tyr-Gly-Thr-Leu-Val-Thr-Lys-Arg-Arg-Ala-Arg-Ala-Ala Val-Val-Leu-Val-Trp-Ile-Val-Ser-Ala-Ala-Val-Ser-Phe-Ala- Pro-Ile-Met-Ser-Gln-Trp-Trp-Arg-Val-Gly-Ala-Asp-Ala-Glu- Ala-Gln-Glu-Cys-His-Ser-Asn-Pro-Arg-Cys-Cys-Ser-Phe-Ala Ser-Asn-Met-Pro-Tyr-Ala-Leu-Leu-Ser-Ser-Ser-Val-Ser-Phe Tyr-Leu-Pro-Leu-Leu-Val-Met-Leu-Phe-Val-Tyr-Ala-Arg-Val- Phe-Val-Val-Ala-Lys-Arg-Gln-Arg-His-Leu-Leu-Arg-Arg-Glu- Leu-GLy-Arg-Phe-Ser-Pro-Glu-Glu-Ser-Pro-Pro-Ser-Pro-Ser Arg-Ser-Pro-Ser-Pro-Ala-Thr-Gly-Gly-Thr-Pro-Ala-Ala-Pro- Asp-Gly-Val-Pro-Pro-Cys-Gly-Arg-Arg-Pro-Ala-Arg-lieu-lieu- Pro-Leu-Arg-Glu-His-Arg-Ala-Leu-Arg-Thr-Leu-Gly-Leu-Ile- Met-Gly-Ile-Phe-Ser-Leu-Cys-Trp-Leu-Pro-Phe-Phe-Leu-Ala- Asn-Val-Leu-Arg-Ala-Leu-Ala-Gly-Pro-Ser-Leu-Val-Pro-Ser- Gly-Val-Phe-Ile-Ala-Leu-Asn-Trp-Leu-Gly-Tyr-Ala-Asn-Ser Ala-Phe-Asn-Pro-Val-Ile-Tyr-Cys -Arg-Ser-Pro-Asp-Phe-Arg- Asp-Ala-Phe-Arg-Arg-Leu-Leu-Cys-Ser-Tyr-Gly-Gly-Arg-Gly Pro -Glu-Glu- Pro -Arg-Ala-Val -Thr-Phe-Pro-Ala-Ser-Pro-Val - Glu-Ala-Arg-Gln-Ser-Pro-Pro-Leu-Asn-Arg (Il), lequel peptide présente 82 % d'homologie avec le peptide ss3 humain. 14') Fragment du peptide selon la revendication 13, caractérisé en ce qu'il comprend un fragment de 25 amino-acides, correspondant à la région transmembranaire TMI de la séquence de formule II. 15') Fragment du peptide selon la revendication 13, caractérisé en ce qu'il comprend un fragment de 30 aminoacides, correspondant au fragment COOH terminal de la séquence de formule II. 16-) Vecteur recombinant de clonage et/ou d'expression, caractérisé en ce qu'il comprend une séquence nucléotidique selon l'une quelconque des revendications 1 à 8. 17') Vecteur selon la revendication 16, caractérisé en ce qu'il est constitué par un vecteur recombinant approprié comprenant en particulier une origine de réplication dans un microorganisme hôte approprié, notamment une bactérie ou une cellule eucaryote, au moins un gène dont l'expression permet la sélection soit des bactéries, soit des cellules eucaryotes ayant reçu ledit vecteur, une séquence régulatrice appropriée, notamment un promoteur permettant l'expression des gènes dans lesdites bactéries ou cellules eucaryotes, et dans lequel est insérée une séquence nucléotidique ou un fragment de séquence selon l'une quelconque des revendications 1 à 8, lequel vecteur est un vecteur d'expression d'un peptide, d'un fragment de peptide ou d'une combinaison de fragments de peptides ayant une activité de récepteur B3-adr- énergique murin. 18') Vecteur selon la revendication 17, caractérisé en ce qu ' il est constitué successivement d'une origine de réplication approprié, d'un gène de résistance à l'ampicilline, du promoteur viral SV40 d'une séquence nucléotidique selon l'une quelconque des revendications 1 à 5 codant pour un peptide ayant une activité de récepteur ss3-adrénergique murin, d'un site de polyadénylation dérivé du virus de l'hépatite B (HBsAg) et du gène codant pour la dihydrofolate réductase (DHFR), enzyme qui permet la survie des cellules dans un milieu dépourvu en glycine, hypoxanthine et thymidine. 19') Vecteur selon la revendication 18, caractérisé en ce qu'il a été déposé sous le n I-1026 en date du 14 janvier 1991 auprès de la Collection Nationale de Cultures de Microorganismes tenue par 1'INSTITUT PASTEUR. 20') Cellule hôte appropriée, obtenue par transformation génétique, caractérisée en ce qu'elle est transformée par un vecteur d'expression selon l'une quelconque des revendications 16 à 19. 21') Cellule hôte selon la revendication 20, caractérisée en ce qu'elle est notamment constituée par les cellules de la lignée CHO (Chinese Hamster Ovary). 22') Processus d'expression d'un peptide selon l'une quelconque des revendications 12 à 15, caractérisé en ce que la cellule hôte, résultant de la transformation par un vecteur contenant une séquence nucléotidique ou un fragment de celle-ci, codant pour un peptide d'origine murine ayant une activité de récepteur ss3-adrénergique ou un fragment de celui-ci, est cultivée de manière à produire et à transporter ledit peptide exprimé vers la membrane, de telle sorte que les séquences transmembranaires dudit récepteur ss3 soient exposées à la surface de la membrane de l'hôte cellulaire transformé. 23') Modèle d'étude des récepteurs ss3-adréner- giques, caractérisé en ce qu'il est constitué par des cellules hôtes selon l'une quelconque des revendications 20 et 21, c'est-à-dire exprimant un récepteur ss3-adréner- gique murin à la surface de leur membrane. 24 ) Procédé de détection de la capacité d'une substance à se comporter comme ligand vis-à-vis d'un peptide selon l'une quelconque des revendications 12 à 15, lequel procédé comprend - la mise en contact de ladite substance avec une cellule hôte préalablement transformée par un vecteur d'expression selon l'une quelconque des revendications 16 à 19, laquelle cellule hôte exprime ledit peptide murin (RAss3 murin), le cas échéant après induction physique ou chimique appropriée, et laquelle mise en contact est réalisée dans des conditions permettant la formation d'une liaison entre l'un au moins des sites spécifiques et ladite substance s'il y a lieu et - la détection de la formation éventuelle d'un complexe du type ligand-peptide. 25 ) Méthode de production de souris transgéniques surexprimant le récepteur ss3-adrénergique, laquelle méthode comprend l'introduction de plusieurs copies d'un segment comprenant au moins la séquence de formule I selon la revendication 2 associée à un promoteur convenable, dans les cellules d'un embryon de souris à un stade précoce. 26 ) Méthode de production selon la revendication 25, caractérisée en ce que le promoteur est le promoteur du gène RA-MuB3, notamment de façon à respecter sa répartition tissulaire d'origine. 27 ) Méthode de production selon la revendication 25, caractérisée en ce que le promoteur est un promoteur d'un gène exprimé spécifiquement dans un tissu, notamment le promoteur de l'actine musculaire. 28 ) Souris transgéniques, caractérisées en ce qu'elles sont obtenues par la méthode de production selon les revendications 25 à 27. 29 ) Méthode de production de souris recombinantes, n'exprimant plus le récepteur ss3-adrénergique, caractérisée en ce que - l'on réalise, dans la séquence de formule I, selon la revendication 2, une mutation convenable qui inhibe l'expression du gène codant pour le récepteur ss3- adrénergique murin - l'on introduit ladite séquence I modifiée dans un segment de 1'ADN génomique de souris, associé à un marqueur approprié, de manière à obtenir une séquence marquée M, contenant la séquence de formule I modifiée ; - l'on intègre ladite séquence M, in vitro, dans les cellules souches de lignées germinales d'embryon de souris ; puis - l'on réinjecte lesdites cellules souches à une souris ; et après recombinaison homologue, - l'on obtient à la génération F2 des souris recombinées homozygotes, reconnaissables à la présence du marqueur. 30') Méthode selon la revendication 29, caractérisée en ce que ledit segment d'ADN génomique de souris comprend au plus 14 Kbases. 31-) Méthode selon la revendication 30, caractérisée en ce que lorsque ledit fragment est de 14 Kbases, il comprend notamment les sites de restriction suivants : 3 sites SphI, 2 sites BamHI, 2 sites HindIII, 4 sites XbaI, 4 sites SacI, 1 site KpnI, 1 site SmaI, 2 sites BglII, 2 sites PvuII, 1 site PstI et 1 site EcoRI. 32 ) Méthode selon l'une quelconque des revendications 29 à 31, caractérisée en ce que la séquence de formule I mutée est comprise entre un site BglII et un site BamHI du segment d'ADN génomique de souris. 33 ) Souris recombinantes, caractérisées en ce qu'elles sont obtenues par la méthode de production de souris recombinantes selon l'une quelconque des revendications 29 à 32. 34 ) Procédé pour l'étude de l'affinité d'un peptide selon l'une quelconque des revendications 12 à 15 pour un ou plusieurs ligands déterminés, lequel procédé comprend - la transformation d'une cellule hôte appropriée par un vecteur d'expression selon l'une quelconque des revendications 16 à 19 - la culture de la cellule hôte transformée, dans des conditions permettant l'expression du récepteur ss3 codée par la séquence nucléotidique, et le transfert du récepteur ss3 exprimé vers la membrane de ladite cellule, de sorte que les séquences transmembranaires du récepteur ss3 soient exposées à la surface de la cellule hôte transformée - la mise en contact de ladite cellule avec les ligands déterminés ; et - la détection d'une réaction affine entre ladite cellule transformée et lesdits ligands déterminés. 35 ) Kit ou trousse de détection de l'affinité éventuelle d'un ligand pour un peptide selon l'une quelconque des revendications 12 à 15, lequel kit comprend - une culture de cellules hôtes transformées par un vecteur d'expression selon l'une quelconque des revendications 16 à 19 - des moyens physiques ou chimiques pour induire l'expression d'un peptide (récepteur ss3 murin ou un fragment de celui-ci) codé par une séquence nucléotidique selon l'une quelconque des revendications 1 à 5, contenue dans un vecteur dont le promoteur est inductible - un ou plusieurs ligands témoins ayant des affinités déterminées pour ledit peptide ; et - des moyens physiques ou chimiques pour la caractérisation de l'activité biologique du peptide exprimé. 36 ) Anticorps dirigés de façon spécifique contre l'un des peptides selon l'une quelconques 12 à 15, caractérisés en ce qu'ils ne reconnaissent ni le récepteur adrénergique ssl, ni le récepteur adrénergique ss2. 37g) Anticorps selon la revendication 36, caractérisé en ce qu'ils sont des anticorps polyclonaux. 38 ) Anticorps selon la revendication 36, caractérisé en ce qu'ils sont des anticorps monoclonaux.