Brevet FR2666588A1 — publié le 19920313

SEQUENCE NUCLEOTIDIQUE REGULATRICE DE L'INITIATION DE TRAN8CRIPTION L'invention concerne une séquence nucléotidique, régulatrice de l'initiation de transcription et son utilisation dans la production, par voie recombinante, de polypeptides. Le problème technique qui se posait lors de l'élaboration de la présente invention était d'identifier un promoteur fort, et éventuellement thermoinductible, utilisable chez un grand nombre de microorganismes, et en particulier chez les Actinomycètes. Les Actinomycètes constituent un ordre bactérien d'une importance économique et médicale considérable, rappelons seulement que les Actinomycètes comportent notamment les genres Streptomyces et Mycobacterium. Les Streptomyces sont utilisés pour la production d'environ 70 % des antibiotiques aujourd'hui commercialisés ; en outre, si les méfaits de Mycobacterium tuberculosis et Mycobacterium leprae ne sont plus à décrire, il existe un grand intérêt pour l'expression d'antigène hétérologue dans la souche de M. Bovis BCG afin d'obtenir une souche vaccinale vivante polyvalente. La génétique de ces bactéries a été peu étudiée au niveau moléculaire, la régulation de l'expression génétique semble toutefois différente de celle qui a été décrite pour des bactéries plus étudiées comme Escherichia coli ou Bacillus subtilis. En particulier, les Actinomycètes, dont 1'ADN est généralement riche en G+C, reconnaissent peu et mal les séquences "promoteurs" caractérisés chez Escherichia coli ou Bacillus subtilis. Baird et al (J. Gen. Microbiol. 1989, 135, 931-939) ont étudié les gènes codant pour des protéines de choc thermique chez Mycobacterium et ont postulé que deux séquences TTGAG et TCTCATGT, se trouvant en amont de la séquence codant pour la protéine de choc thermique de 10 kDa chez Mycobacterium tuberculosis, constituent les régions -35 et -10 du promoteur. En effet, ces deux séquences présentent une homologie élevée avec la séquence du promoteur consensus chez E. coli. En outre, des séquences se trouvant en amont des gènes codant pour d'autres protéines de choc thermique chez différentes espèces de Mycobacterium (par exemple, la protéine de 65 kDa de Mycobacterium leprae ou celle de 64 kDa chez M. bovis) renferment également un couple de séquences du même type, c'est-à-dire : TTGCCG et TTTCAT, ou TTGCCG et CTTCAT, et qui présentent donc une homologie élevée avec le promoteur d'E. coli et avec les séquences "-35 et -10" du Mycobacterium tuberculosis 10 kDa. D'après cet article et celui de Thole et al. (Infection and immunity, 55 1987, 1466-1475), les promoteurs responsables de la transcription des gènes de protéines de choc thermique chez Mycobacterium renferment, en tant que séquences -35 et -10, ce type de couple de séquences. Ces séquences seront appelées dans ce qui suit "séquences -10 et -35 du type E. coli". Ceci étant, les auteurs n'avaient pas confirmé cette hypothèse par cartographie et l'identité des promoteurs reste par conséquent incertaine. D'une manière surprenante, les présents inventeurs ont constaté que la séquence -10 et -35 du type E. coli est également présente chez Streptomyces, mais ne joue pas le rôle d'initiation de transcription des protéines de choc thermique chez des bactéries de ce genre. I1 est à noter que Baird et Thole, dans les articles cités ci-dessus, avaient en outre constaté la présence, dans des séquences en amont des gènes codant pour les protéines de choc thermique chez Mycobacterium, d'un motif palindromique comportant la séquence GCACTC 9N GAGTGC. Toutefois, le rôle précis de ce motif n'avait pas été identifié. Thole postule que ce motif est impliqué soit dans la terminaison de transcription d'un opéron se trouvant en amont du gène codant pour la protéine de choc thermique, soit dans la régulation de traduction d'un messager polycistronique. Dans le but de cloner un promoteur fort (et éventuellement thermoinductible), utilisable chez un grand nombre d'Actinomycètes, les inventeurs ont étudié la réponse au choc thermique chez les Streptomyces et ont cloné une protéine fortement exprimée afin de caractériser son promoteur. En effet, le phénomène de réponse à un choc thermique par synthèse de novo de protéines est un phénomène universel ; on peut donc prévoir que sa régulation sera semblable chez divers Actinomycètes et notamment que les promoteurs auront des séquences consensuelles permettant leur utilisation dans un grand nombre de souches. Les inventeurs ont ainsi identifié et caractérisé deux promoteurs fonctionnels chez les Streptomyces et, en outre, suite à l'observation que chacun de ces promoteurs renfermait le motif GCACTC 9N GAGTGC ont pu identifier la fonction dudit motif. L'invention concerne une séquence nucléotidique recombinante caractérisée en ce qu'elle comprend - une séquence régulatrice de l'initiation de transcription, cette séquence régulatrice comportant un promoteur en association avec le motif GCACTC 9N GAGTGC dans lequel "N" signifie l'une quelconque des 4 bases : thymine, guanine, adénine et cytosine - une séquence codant pour un polypeptide, dit "polypeptide heterologue" autre que celle naturellement associée avec ledit promoteur ladite séquence codante étant positionnée en aval de ladite séquence régulatrice de l'initiation de transcription, à un site qui, dans des conditions appropriées, permettrait l'expression du polypeptide sous le contrôle dudit promoteur. La séquence nucléotidique recombinante de l'invention est apte à permettre l'expression d'un gène hétérologue dans une cellule la contenant. La séquence régulatrice de l'initiation de transcription, qui fait partie de la séquence nucléotidique recombinante, est composée d'un promoteur en association avec le motif GCACTC 9N GAGTGC. Dans ce contexte, "en association" veut dire que le motif GCACTC 9N GAGTGC peut être distinct du promoteur ou qu'il peut être compris, au moins en partie, dans le promoteur. Cette dernière possibilité englobe à la fois la situation où le motif chevauche la séquence promotrice et la situation où le motif constitue une partie intégrale du promoteur. Des promoteurs associés avec le motif GCACTC 9N GAGTGC, qui sont particulièrement préférés selon l'invention, sont les promoteurs présents chez les Actinomycètes et plus particulièrement ceux qui, dans le génome de la bactérie, sont normalement associés à des protéines de choc thermique. Comme exemples de ce type de promoteurs, on peut citer les promoteurs des protéines de choc thermique de 18 kDa (P1) et de 56 kDa (P2) chez Streptomyces albus identifiés dans le cadre de l'invention par les inventeurs P1 : CATTGGCACTCCGCTTGACCGAGTGCTAATCGCGGTCATAGTCTCAGCTCTG 5' P2 GGAGGCCCCTAGCGCCTCCACTCTCCTACCCCGAGTGCTATTATTGGCGTTA 5' 3' Chacun de ces promoteurs peut être raccourci de 4 ou 5 bases maximum du côté 5', sans nuire à son activité. D'autres types de promoteurs sont ceux des proteines de choc thermique de Mycobacterium tuberculosis 10 kDa et 65 kDa, de M. bovis 64 kDa et de M. leprae 65 kDa. L'association du motif GCACTC 9N GAGTGC avec le promoteur confere un caractère thermoinductible au promoteur. I1 est probable que ce motif soit un opérateur et constitue le site de fixation d'un répresseur, empêchant ainsi la RNA polymerase de se fixer sur les séquences -10 et -35 du promoteur. Dans le cas où le motif est distinct du promoteur, il est de préférence en amont du promoteur, par exemple d'environ 150 à 200 bases. La séquence recombinante de l'invention comporte, outre la séquence régulatrice d'initiation de transcription, une séquence codant pour un polypeptide dit "polypeptide hétérologue", autre que celle naturellement associée audit promoteur. Le promoteur est ainsi dans un environnement génétique immédiat différent de celui qui l'entoure dans le génome dont il est issu. Comme exemples de types de polypeptides hétérologues, on peut citer des antigènes neutralisants utilisables dans la production de vaccins vivants recombinants ou des polypeptides conférant une résistance à un antibiotique, des enzymes, etc... Dans la séquence nucléotidique de l'invention, la séquence codante est positionnée en aval de ladite séquence régulatrice. Bien entendu, leurs positions relatives sont telles que l'expression de la séquence codante a lieu sous le contrôle du promoteur. L'invention concerne en outre un vecteur d'expression contenant la séquence nucléotidique de l'invention, par exemple un plasmide. L'invention vise également une cellule transformée par ce vecteur d'expression, ladite cellule étant capable de reconnaître le promoteur utilisé dans la séquence régulatrice d'initiation de transcription. Les cellules transformées sont de préférence des cellules prokaryotes, et plus particulièrement, les prokaryotes appartenant à l'ordre des Actinomycètes, par exemple Streptomyces ou Mycobacterium. L'invention concerne en outre un procédé pour la production d'un polypeptide caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes - transformation d'une cellule par un vecteur d'expression, selon l'invention, dans des conditions permettant l'expression dudit polypeptide, ladite cellule étant capable de reconnaître ledit promoteur - récupération du polypeptide exprimé. Les conditions permettant l'expression du polypeptide sont celles connues dans l'art, et dans le cas présent incluent, de préférence, l'application d'un choc thermique, ce qui a pour effet d'induire l'expression. Le choc thermique peut être une augmentation de la température pour atteindre environ 40"C à 45"c, par exemple 37"C ou 41"C chez Streptomyces, 42"C à 45"C pour Mycobacterium. I1 est intéressant de noter que l'utilisation des promoteurs P1 et P2 de l'invention résulte en une expression maintenue de la protéine hétérologue à haute température, par exemple chez Streptomyces entre 37 et 41"C. Un autre aspect de l'invention concerne la possibilité de transformer un promoteur en un promoteur thermoinductible par son association avec le motif GCACTC 9N GAGTGC. Plus particulièrement, cet aspect de l'invention concerne un procédé pour conférer un caractère thermoinductible à un promoteur, caractérisé par la juxtaposition d'une part, d'une séquence comprenant le motif GCACTC 9N GAGTGC et, d'autre part, du promoteur, la séquence comprenant le motif GCACTC 9N GAGTGC étant positionnée en amont du promoteur, ou par l'insertion de la séquence comprenant le motif GCACTC 9N GAGTGC à un site qui est, au moins en partie, au sein du promoteur, ce dernier site étant choisi de manière à ce que la simple insertion dudit motif ne perturbe pas l'activité du promoteur. Bien entendu, la position précise que doit avoir le motif GCACTC 9N GAGTGC par rapport au promoteur pour pouvoir conférer le caractère thermoinductible peut varier selon le promoteur utilisé. Ceci peut être vérifié en détectant, lors de l'application d'un choc thermique, l'expression d'un gène hétérologue facilement décelable, par exemple un gène marqueur comme LacZ, dans une cellule transformée par la construction sous test. Le positionnement du motif GCACTC 9N GAGTGC à un site d'environ 150 à 200 bases en amont du promoteur peut conférer ce caractère thermoinductible. Le motif GCACTC 9N GAGTGC peut aussi, dans certains cas, être inséré à un site qui est, au moins en partie, au sein du promoteur.Ceci étant, le site d'insertion doit être choisi de telle manière que la simple insertion du motif ne perturbe pas l'activité du promoteur au-delà de son effet thermoinductible. I1 est important de ne pas modifier les séquences -10 et -35 du promoteur lors de cette insertion. Le caractère thermoinductible de la séquence régulatrice d'initiation de transcription ainsi produite peut être vérifié en appliquant la méthode décrite ci-dessus. Lors de la recherche des promoteurs, les inventeurs ont investigué la réponse au choc thermique de différentes espèces de Streptomyces. Outre les principales protéines de choc thermique à poids moléculaire de 90-100, 70 et 56-58 kDa, une protéine de 16 à 18 kDA a été observée chez chacune des espèces testées. Cette protéine (appelée HSP18) est produite à un taux très élevé chez Streptomyces albus lors du passage de la culture de 30 à 37"C et peut constituer jusqu'à 10 % des protéines totales. L'induction par choc thermique des proteines de 70 et 90-100 kDa est transitoire, tandis que celle des protéines de 56-58 kDa et 18 kDa est constitutive, la production étant maintenue à des températures élevées. La protéine nommée HSP18 a été purifiée et caractérisée. Ses propriétés ne sont pas semblables à celles d'autres protéines de choc thermique. Par exemple, outre sa taille relativement petite, et sa régulation constitutive, elle possède un point isoélectrique de plus de 9. Ce point isoélectrique très élevé n'est pourtant pas reflété par sa composition en acides aminés (voir tableau 2). De plus, la détermination de sa composition en acides aminés a révélé une teneur en méthionine plutôt basse, qui n'est pas cohérente avec les résultats des expériences d'incorporation de (355] méthionine (voir tableau 1). Ces observations suggèrent que la protéine HSP18 subit une modification qui a lieu après la traduction. La protéine HSP18 ne réagit pas avec des anticorps polyclonaux contre la protéine GroEL d'E. coli, ni avec des anticorps monoclonaux spécifiques pour la protéine de choc thermique de 65 kDa de Mycobacterium leprae. Une étude de transcription du gène "groEL-l" codant pour la protéine HSP18 a révélé que HSP 18 est, en fait, une protéine tronquée. Le gène groEL-l code en réalité pour une protéine de 56 kDa qui est modifiée après traduction et donne ainsi naissance à la protéine de 18 kDa. La figure 6 montre la séquence partielle du gène groEL-l et sa traduction en acides aminés. Cette séquence corrobore les séquences déterminées par dégradation d'Edman sur la HSP18. I1 manque à la séquence de la figure 6 l'extrémité COOH terminale de la protéine de 56 kDa. La séquence de la protéine de 18 kDa est comprise dans cette séquence-mère, leurs deux extrémités NH2 terminales coïncidant (acide aminé n" 1). HSP18 s'étend au maximum jusqu'à l'acide aminé 170 environ. L'invention vise un polypeptide de choc thermique comportant soit (i) la séquence d'acides aminés indiquée dans la figure 6, soit (ii) une séquence présentant au moins 85 % d'homologie avec cette séquence, soit (iii) une partie de la séquence (i) ou (ii) comprenant l'extrémité NH2 et s'étendant jusqu'aux environs de l'acide aminé 170, le polypeptide (iii) ayant une taille d'environ 18 kDa et un point isoélectrique très basique d'environ 9. Par analogie avec la fonction d'autres protéines du type GroEL, il est probable que la HSP18 soit essentielle pour la survie de la cellule et joue un rôle de "chaperon moléculaire", c'est-à-dire se fixe d'une manière transitoire sur des polypeptides naissants, empêchant l'agrégation de protéines insolubles et permettant le repliement ainsi que le transport à travers la membrane cellulaire. I1 est également possible que la HSP18 soit impliquée dans la résistance de la souche à ses propres antibiotiques ou dans la thermotolérance. Différents aspects de l'invention sont illustrés dans les figures - La figure 1 montre, de façon schématique, le clonage des gènes groEL-l, groES et groEL2. Les sites ayant servi pour la construction des plasmides pPM1005 et pPM997+Neo sont indiqués entre parenthèses. - La figure 2 montre le promoteur P2 de groEL2 ("A") et le promoteur P1 de groES groEL-l ("B"). - La figure 3 montre le vecteur pPM1005, contenant le gène neo de Tn5 sous le contrôle du fragment SmaI de 440 pb de Streptomyces albus. Ce fragment contient le promoteur P1 et les 160 premières paires de bases du gène groES. - La figure 4 montre le vecteur pPM997+Neo contenant le gène neo de Tn5 sous le contrôle du fragment BglII / SstI de 800 pb de Streptomyces albus. Ce fragment contient le promoteur P2 et les 183 premières pb du gène groEL2. - La figure 5 montre la séquence nucléotidique, et la séquence d'acides aminés déduite, du gène structurel groEs et de la protéine GroES. - La figure 6 illustre la séquence nucléotidique ainsi que la séquence d'acides aminés déduite de la protéine précurseur de HSP18. - La figure 7 montre la séquence nucléotidique de l'opéron gro es el avec sa séquence promotrice. EXEMPLES Buffet de la température sur la synthèse de protéine chez Streptonyces Les extraits de protéines totales de 15 espèces différentes de Streptomyces ont été préparés avant et après application d'un choc thermique (passage de la température de 30"C à 41"C). Des protéines majeures de choc thermique de 90-100, 70 et 56-58 kDa ont été détectées sur gel de SDS-PAGE, coloré au bleu de Coomassie. De plus, une bande moléculaire correspondant à une protéine de 18 kDa a également été observée chez certaines espèces. Cette protéine était très fortement induite chez Streptomyces albus. Propriétés immunologiques des protéines Une analyse "western blot" des protéines sur gel, avec des anticorps monoclonaux contre la protéine de choc thermique de 65 kDa de Mycobacterium leprae et avec des anticorps polyclonaux contre la protéine GroEL d'E.coli, a été effectuée. Aucune des protéines n'a réagi avec les anticorps monoclonaux et seule, le HSP 56-58 a réagi avec les anticorps polyclonaux. Etude des protéines de choc thermique chez Streptomyces albus La réponse au choc thermique chez Streptomyces albus a été analysée par électrophorèse des protéines totales à 30"C et 41"C. Les protéines ont été marquées pendant 40 minutes. Les acides aminés utilisés étaient C35S] méthionine et (14C] alanine. Quatre protéines principales de choc thermique ont pu être visualisées. HSP90, qui n'était pas détectable à 30"C, représentait environ 3 % des protéines totales après choc thermique. Le taux de HSP70 a au moins doublé. HSP56-58 présentait une augmentation de 30 % et HPS 18, qui n'était pas décelable avant le choc thermique, représentait 4 à 7 % des protéines totales après le choc (voir tableau 1). TABLEAU 1 : QUANTIFICATION DES TAUX DE SYNTHESE DES PROTEINES MAJEURES DE CHOC THERMIQUE APRES MARQUAGE AU 14C ALANINE ET 35S METHIONINE Taux de synthèse à 30 C et 41 C Protéine MWb 35S/300C 35S/41"C 14C/300C 14C/41"C 90 c 3 - 2,9 70 2,7 6,4 2,3 5,8 56-58 6,8 8,4 6,2 9,0 18 > 0,7? 6,9 > 0,7? 3,8 a. exprimé sous forme de pourcentage du O.D. mesuré sur autoradiogramme. b. poids moléculaire apparent en kDa. c. pas détecté. Etude des HSP18 de Streptomyces albus La protéine de 18 kDa de Streptomyces albus (HSP18), qui est extrêmement basique, a été purifiée et sa composition partielle en acides aminés déterminée (voir tableau 2) TABLEAU 2 : COMPOSITION EN ACIDES AMINES DU HSP18 Asx 12,2 Thr 9,4 Ser 3,2 Glx 10,8 Ala 12,1 Cys 0,0 Met 0,0 Val 9,2 Ile 5,7 Leu 6,8 Tyr 1,3 Phe 1,9 His 0,3 Lys 6,9 Arg 4,5 Gly 11,0 Pro 4,4 La séquence de l'extrémité NH2 et de deux fragments internes à la protéine ont été déterminés par dégradation d'Edman. Synthèse droligonucléotides Deux sondes nucléotidiques dégénérées de 30 bases ont été synthétisées en se basant sur la séquence peptidique d'un des fragments internes décrits ci-dessus. La séquence de ce fragment est ... D - D - P - Y - E - N - L - G - A - Q... Les sondes deoxyoligonucléotides synthétisés étaient les suivantes 5' GAC-GAC-CCC-TAC-GAG-AAC-CTG-GGC-GCC-CA 3'OL1 G C T 3' CTG-CTG-GGG-ATG-CTC-TTG-GAC-CCG-CGG-GTC 5' OL2 C G A Clonage du gène de la protéine thermoinductible HSP18 Ces sondes oligonucléotidiques ont permis, après hybridation à 60"C en SSC 5x, de caractériser et de cloner un fragment de restriction Xhol de 1.9kb de Streptomyces albus (voir clonage A de la figure 1). Ce fragment a été séquencé ; il contient une phase de lecture ouverte qui s'étend à partir d'un ATG en position 430 jusqu'au-delà de la région clonée codant donc pour une protéine de plus de 50 kDa, mais dont l'extrémité NH2 terminale correspond à la séquence nucléotidique déduite de la séquence peptidique d'HSP18. Ce gène a, en outre, sur toute sa longueur une forte homologie de séquence en acides aminés avec la protéine heat-shock groEL d'Escherichia coli et la protéine de 65 kDa de Mycobacterium leprae (75 % d'homologie). Dans un premier temps, ce gène a été appelé "groELl". Démonstration et clonage d'un deuxième gène "groEL- like" chez Streptomyces albus Des hybridations du génome de Streptomyces albus, en utilisant comme sonde la partie 5' du gène de HSP65 de Mycobacterium leprae, ont été effectuées ; cette sonde donne deux signaux après hybridation avec le génome de Streptomyces albus, un fort et un faible et cela quel que soit l'enzyme utilisé pour la digestion de l'ADN. Le signal faible correspond aux signaux obtenus avec les oligonucléotides déduits de HSP18, c'est-à-dire au gène groEL1. Le signal fort correspond à un gène codant pour une autre protéine "groEL-like" de taille canonique (65 kDa). I1 y a donc deux gènes groEL-like chez Streptomyces albus. Clonage du gène de la protéine heat shock HSP65 de Streptomyces albus Le fragment de restriction XhoI de 1,2 kb fortement allumé par la sonde HSP65 de Mycobacterium leprae a été cloné (clonage C figure 1). La séquence nucléotidique de ce fragment a été déterminée. Le fragment XhoI de 1,2 kb code pour un fragment interne à une protéine homologue à 90 % avec la protéine de 65 kDa de Mycobacterium leprae, en outre les deux gènes "groEl-like" 1 et 2 chez Streptomyces albus sont homologues à 80 %. Le gène codant pour cette protéine de 65 kDa a été appelé groEL2. Etude de la transcription des gènes "groEL-like et recherche des promoteurs Les ARN totaux de la souche Streptomyces albus ont été extraits au cours du temps lors d'une expérience de choc thermique et traités selon la technique de "Northern", puis hybridés avec divers oligonucléotides, synthétisés soit à partir de la séquence de groELl, soit à partir de la séquence de groEL2 et spécifiques de chacune des régions choisies dans ces deux séquences. Les mêmes filtres de nitrocellulose ont été utilisés dans de nouvelles hybridations avec la totalité des deux fragments clonés. Trois transcrits très fortement thermoinductibles sont observés ; leur taille est respectivement d'environ 2500, 2100 et 650 bases. Celui de 2100 b correspond au transcrit de groEL2 celui de 650 b au transcrit d'un gène situé en amont de groELl ; celui de 2500 b à la co-transcription de groELl et du gène situé en amont de groELl. Ces résultats indiquaient, d'une part, que les deux gènes groEL1 et groEL2 avaient bien des promoteurs forts et inductibles et que, d'autre part, le promoteur de groEL1 n'avait pas été cloné dans le fragment de 1,9 kb. En particulier, ces résultats montrent qu'aucun ARN ne commençait à la boucle notée P? dans la figure 1, séquence postulée comme pouvant servir de promoteur chez Mycobacterium. En effet, cette boucle renferme deux séquences TTTGCCGGG et TTTCAT qui, en l'absence de travaux de cartographie de promoteur, ont été considérées comme étant respectivement les régions -35 et -10 du promoteur de la protéine de 65 kDa chez Mycobacterium (voir par exemple, J. Gen Microbiol. (1989), 135, 931-939). Ces résultats indiquent que ces deux séquences ne font pas partie du promoteur du gène groEL1 chez Streptomyces albus. Le promoteur recherché devait se situer en amont d'un gène formant un opéron avec groELl. Le gène situé en amont de groELl a été identifié ; il s'agit d'un gène fortement homologue au gène groES d'E. coli où il forme également un opéron avec groEL1 (voir figure 5). Clonage des régions promoteurs des deux gènes groELl et groEL Deux nouveaux fragments d'ADN de Streptomyces albus, hydrolysés par BclI / SacI (1700 bp) et BglII / SacI / (900 bp) ont été clonés à l'aide d'oligonucléotides synthétisés à partir de la séquence des fragments précédemment clonés et décrits ci-dessus. Ils recouvrent donc partiellement, respectivement le fragment portant groELl et celui portant groEL2 et s'étendent en amont sur environ 800 bp pour chacun d'eux (clonages B et D figure 1). Ces fragments ont été séquencés, puis la caractérisation des promoteurs a été faite par cartographie à la nucléase S1 et par extension d'amorce à la reverse transcriptase. Les promoteurs des deux gènes groEL1 et groEL2 ainsi caractérisés n'ont pas une séquence identique (figure 2), mais ils ont une homologie de structure importante, ils présentent en particulier tous deux le motif palindromique suivant GCACTC 9N GAGTGC Les séquences des deux promoteurs sont les suivantes P1 :: CATTCGCACTCCGCTTGACCGAGTGCTAATCGCGGTCATAGTCTCAGCTCTG P2 GGAGGCCCCTAGCGCCTGCACTCTCCTACCCCGAGTGCTATTATTGGCGTTA Utilisation des promoteurs de groELl et groEL2 pour l'expression d'un gène hétérologue Ces deux promoteurs ont été utilisés pour l'expression du gène hétérologue neo du transposon Tn5 de Klebsiella. Ce gène code pour une aminoside phosphotransferase (APH) conférant la résistance à la néomycine / kanamycine. Ce gène a été cloné en aval des deux promoteurs (figures 3 et 4) puis introduit chez Streptomvces albus et également chez S. lividans. Le gène neo est alors fortement exprimé comme en témoigne l'important niveau de résistance à ces antibiotiques qu'il confère ; en outre, nous avons pu visualiser la synthèse de 1'APH dans les extraits bruts après électophorèse sur gel de polyacrylamide et immuno-blot avec des anti-corps anti-APH. I1 faut souligner que ces résultats ont été obtenus chez Streptomyces avec un vecteur intégratif. I1 n'y a donc dans ces expériences qu'une copie du gène neo et du promoteur étudié par génome. En effet, afin de juger la force du promoteur, il était important de ne pas augmenter artificiellement l'expression de neo en augmentant son nombre de copies, par l'utilisation d'un vecteur à grand nombre de copies. Les fragments HindIII-BamHI du pPM1005 et SmaI SmaI du pPM997 ont également été insérés chez Mycobacterium. Le fragment SmaI-SmaI du pPM997 renferme le gène neo, le promoteur P2 et le terminateur. REVENDICATIONS 1. Séquence nucléotidique recombinante caractérisée en ce qu'elle comprend - une séquence régulatrice de l'initiation de transcription, cette séquence régulatrice comportant un promoteur en association avec le motif GCACTC 9N GAGTGC, dans lequel "N" signifie l'une quelconque des 4 bases thymine, guanine, adénine, et cytosine - une séquence codant pour un polypeptide, dit t'polypeptide heterologue" autre que celle naturellement associée avec ledit promoteur ladite séquence codante étant positionnée en aval de ladite séquence régulatrice de l'initiation de transcription, à un site qui, dans des conditions appropriées, permettrait l'expression du polypeptide sous le contrôle dudit promoteur. 2. Séquence nucléotidique selon la revendication 1 caractérisée en ce que le promoteur est un promoteur normalement associé avec une protéine de choc thermique par exemple du type présent chez Actinomycètes. 3. Séquence nucléotidique selon l'une quelconque des revendications 1 ou 2 caractérisée en ce que le motif GCACTC 9N GAGTGC est compris, au moins en partie, au sein de la séquence du promoteur. 4. Séquence nucléotidique selon les revendications 2 et 3 caractérisée en ce que le promoteur est sélectionné parmi les séquences suivantes: P1 : CATTGGCACTCCGCTTGACCGAGTGCTAATCGCGGTCATAGTCTCAGCTCTG P2 GGAGGCCCCTAGCGCCTGCACTCTCCTACCCCGAGTGCTATTATTGGCGTTA 5. Séquence nucléotidique selon la revendication 1 ou 2 caractérisée en ce que le motif GCACTC 9N GAGTGC est distinct de la séquence du promoteur. 6. Séquence nucléotidique selon la revendication 5 caractérisée en ce que le motif GCACTC 9N GAGTGC se trouve en amont de la séquence du promoteur, par exemple, environ 150 à 200 bases en amont. 7. Vecteur d'expression contenant une séquence nucléotidique recombinante selon l'une quelconque des revendications 1 à 6, et apte à permettre l'expression du polypeptide. 8. Vecteur d'expression selon la revendication 7 qui est un plasmide. 9. Cellule transformée par le vecteur d'expression selon l'une quelconque des revendications 7 et 8, capable de reconnaître ledit promoteur et d'exprimer ledit polypeptide. 10. Cellule selon la revendication 9 qui est une cellule prokaryote par exemple, de l'ordre des Actinomycètes. 11. Procédé pour la production d'un polypeptide caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes - transformation d'une cellule par un vecteur d'expression selon l'une quelconque des revendications 7 ou 8 dans des conditions permettant l'expression dudit polypeptide, ladite cellule étant capable de reconnaître ledit promoteur - récupération du polypeptide exprimé. 12. Procédé selon la revendication 11 caractérisé en ce que les conditions permettant l'expression dudit polypeptide comprennent l'application d'un choc thermique. 13. Procédé selon l'une quelconque des revendications 11 ou 12 caractérisé en ce que la cellule est une cellule prokaryote par exemple de l'ordre des Actinomycètes, et plus particulièrement du genre Streptomyces. 14. Procédé pour conférer un caractère thermoinductible à un promoteur, caractérisé par la juxtaposition d'une part, d'une séquence comprenant le motif GCACTC 9N GAGTGC et, d'autre part, du promoteur; la séquence comprenant le motif GCACTC 9N GAGTGC étant positionnée en amont du promoteur, ou par l'insertion de la séquence comprenant le motif GCACTC 9N GAGTGC à un site qui est, au moins en partie, au sein du promoteur, ce site étant choisi de manière à ce que la simple insertion dudit motif ne perturbe pas l'activité du promoteur. 15. Procédé selon la revendication 14 caractérisé en ce que le promoteur est un promoteur présent chez les Actinomycètes, par exemple chez Streptomyces ou Mycobacterium. 16. Séquence régulatrice d'initiation de transcription caractérisée en ce qu'elle comporte un promoteur en association avec le motif GCACTC 9N GAGTGC, cette séquence étant exempte de la séquence codante normalement associée à ce promoteur. 17. Séquence régulatrice d'initiation de transcription, caractérisée en ce qu'elle comporte une des séquences suivantes P1 : GGAGGCCCCTAGCGCCTGCACTCTCCTACCCCGAGTGCTATTATTGGCGTTA P2 CATTGGCACTCCGCTTGACCGAGTGCTAATCGCGGTCATAGTCTCAGCTCTG 18. Polypeptide de choc thermique comportant - soit (i) la séquence d'acides aminés indiquée ci des ; - soit (ii) une séquence d'acides aminés présentant au moins 90 % d'homologie avec cette séquence ; - soit (iii) une partie de la séquence (i) ou (ii), ladite partie comprenant l'extrémité NHz terminale et ledit polypeptide ayant une taille d'environ 18kDa et un point isoélectrique de 9 environ. 1/1 31/11 ATG GCG AAG ATT CTG AAG TTC GAC GAG GAC GCC CGT CGC GCC CTT GAG CGC GGC GTG AAC Met ala lys ile leu lys phe asp glu asp ala arg arg ala leu glu arg gly val asn 61/21 91/31 CAG CTG GCC GAC ACC GTC AAG GTG ACC ATC GGC CCC AAG GGC CGC AAC GTC GTC ATC GAC gln leu ala asp thr val lys val thr ile gly pro lys gly arg asn val val ile asp 121/41 151/51 AAG AAG TTC GGC GCC CCG ACC ATC ACC AAC GAC GGC GTC ACC ATC GCC CGT GAG GTC GAG lys lys phe gly ala pro thr ile thr asn asp gly val thr ile ala arg glu val glu 181/61 211/71 TGC GAC GAC CCG TAC GAG AAC CTC GGC GCC CAG CTC GTC AAG GAG GTG GCG ACC AAG ACC cys asp asp pro tyr glu asn leu gly ala gin leu val lys glu val ala thr lys thr 241/81 271/91 AAC GAC ATC GCG GGT GAC GGC ACC ACC ACC GCG ACC GTG CTG GCC CAG GCG CTG GTC CGC asn asp ile ala gly asp gly thr thr thr ala thr val leu ala gln ala leu val arg 301/101 331/111 GAG GGC CTG CGC AAC GTC GCC GCC GGC GCC TCC CCG GCC GCC CTG AAG AAG GGC ATC GAC glu gly leu arg asn val ala ala gly ala ser pro ala ala leu lys lys gly ile asp 361/121 391/131 GCC GCC GTC GCC GCC GTC TCC GCC GAG CTG CTC GAC ACC GCG CGC CCG ATC GAC GAC AAG ala ala val ala ala val ser ala glu leu leu asp thr ala arg pro ile asp asp lys 421/141 451/151 TCC GAC ATC GCC GCC GTC GCC GCG CTC TCC GCG CAG GAC AAG CAG GTC GGC GAG CTC ATC ser asp ile ala ala val ala ala leu ser ala gln asp lys gln val gly glu leu ile 481/161 511/171 GCC GAG GCG ATG GAC AAG GTC GGC AAG GAC GGT GTC ATC ACC GTC GAG GAG TCC AAC ACC ala glu ala met asp lys val gly lys asp gly val ile thr val glu glu ser asn thr 541/181 571/191 TTC GGT GTC GAC CTG GAC TTC ACC GAG GGC ATG GCC TTC GAC AAG GGC TAC CTG TCC CCG phe gly val asp leu asp phe thr glu gly met ala phe asp lys gly tyr leu ser pro 601/201 631/211 TAC ATG GTG ACC GAC CAG GAG CGT ATG GAG GCC GTC CTC GAC GAC CCG TAC ATC CTG ATC tyr met val thr asp gln glu arg met glu ala val leu asp asp pro tyr ile leu ile 661/221 691/231 CAC CAG GGC AAG ATC GGT TCG ATC CAG GAC CTG CTG CCG CTG CTG GAG AAG GTC ATC CAG his gln gly lys ile gly ser ile gln asp leu leu pro leu leu glu lys val ile gln 721/241 751/251 GCG GGT GGC TCC AAG CCG CTG CTG ATC ATC GCC GAG GAC GTC GAG GGC GAG GCC CTG TCG ala gly gly ser lys pro leu leu ile ile ala glu asp val glu gly glu ala leu ser 781/261 811/271 ACC CTG GTG GTC AAC AAG ATC CGC GGC ACG TTC AAC GCC GTC GCC GTC AAG GCG CCC GGC thr leu val val asn lys ile arg gly thr phe asn ala val ala val lys ala pro gly 841/281 871/291 TTC GGT GAC CGC CGC AAG GCG ATG CTC GGC GAC ATG GCC ACC CTC ACC GGT GCC ACC GTC phe gly asp arg arg lys ala met leu gly asp met ala thr leu thr gly ala thr val 901/301 931/311 ATC GCC GAG GAG GTC GGC CTC AAG CTC GAC CAG GCC GGT CTG GAC GTG CTG GGC ACC GCC ile ala glu glu val gly leu lys leu asp gln ala gly leu asp val leu gly thr ala 961/321 991/331 CGC CGC GTC ACC GTC ACC AAG GAC GAC ACG ACC ATC GTG GAC GGC GGC GGC AAC GCC GAG arg arg val thr val thr lys asp asp thr thr ile val asp gly gly gly asn ala glu 1021/341 1051/351 GAC GTC CAG GGC CGC GTC GCC CAG ATC AAG GCC GAG ATC GAG TCG ACC GAC TCG GAC TGG asp val gln gly arg val ala gln ile lys ala glu ile glu ser thr asp ser asp trp 1081/361 1111/371 GAC CGC GAG AAG CTC CAG GAG CGC CTC GCC AAG CTG GCC GGC GGC GTC TGC GTG ATC CGC asp arg glu lys leu gln glu arg leu ala lys leu ala gly gly val cys val ile arg 1141/381 1171/391 GTC GGC GCG GCC ACC GAG GTC GAG CTG AAG GAG CGC AAG CAC CGT CTG GAG GAC GCC ATC val gly ala ala thr glu val glu leu lys glu arg lys his arg leu glu asp ala ile 1201/401 1231/411 TCC GCG ACC CGC GCC GCG GTC GAG GAG GGC ATC GTC TCC GGT GGT GGC TCC GCG CTG GTC ser ala thr arg ala ala val glu glu gly ile val ser gly gly gly ser ala leu val 1261/421 1291/431 CAC GCC GTC AAG GTC CTG GAC GAC AAC CTC GGC CGC ACC GGC GAC GAG GCC ACC GGT GTC his ala val lys val leu asp asp asn leu gly arg thr gly asp glu ala thr gly val 19. Polypeptide selon la revendication 18 caractérisé par une séquence d'acides aminés qui s'étend de l'acide aminé numéroté 1 à l'acide aminé 170 au maximum. 20. Séquence d'acide nucléique codant pour une protéine de choc thermique, selon 1'une quelconque des revendications 18 ou 19. 21. Séquence d'acide nucléique selon la revendication 20, caractérisée en ce qu'elle comprend au moins un fragment de la séquence indiquée dans la revendication 18.