Brevet FR2649412A1 — publié le 19910111

ACIDE NUCLEIQUE CODANT POUR L ENZYME DE CONVERSION DE L'ANGIOTENSINE (ECA) TESTICULAIRE' HUMAINE, ET SES APPLICATIONS, NOTAMMENT POUR LE DEPISTAGE IN VITRO DE CETTE ENZYME DANS L'ORGANISME. L'invention concerne un acide nucléique codant pour l'enzyme de conversion de l'angiotensine (ECA) dans les cellules germinales de testicules humains ainsi que des vecteurs contenant cet acide nucléique et l'utilisation de ces derniers pour la production de cette enzyme. L'invention concerne également les applications de cet acide nucléique, notamment pour le dépistage in vitro de cette enzyme dans l'organisme. L'ECA, ou peptidyl dipeptidase A (EC 3.4.15.1), ou encore kininase II, joue un rôle important dans la régulation de la pression artérielle, en hydrolysant l'angiotensine I (peptide inactif libéré après clivage de l'angiotensinogène par la rénine) en angiotensine II vasopressive jouant un rôle majeur dans la régulation de la pression artérielle (SKEGGS, L.T., et al (1986) J. Exp. Med., 103, 295-299). L'inhibition de l'activité de 1'ECA par 1'EDTA et les chélateurs de métaux, indique qu'il s'agit d'une métallopeptidase, plus particulièrement d'une peptidase à zinc, capable d'hydrolyser, non seulement, l'angiotensine I, mais aussi la bradykinine (un peptide vasodilateur et natriurétique qu'elle transforme en un heptapeptide inactif), et de nombreux autres peptides à activité biologique (YANG, H.Y.T. et al (1970) Biochim. Biophys. Acta, 214, 374-376 ; ERDOS, E.G., et al (1987) Lab. Invest., 56, 345-348). L'ECA est une peptidase largement distribuée dans l'organisme, que l'on retrouve par exemple sous forme d'enzyme membranaire a la surface des cellules endothéliales vasculaires, et des cellules épithéliales rénales, ainsi que sous forme d'enzyme circulant dans le plasma (ERDOS, et al (1987) sus-mentionné CARDWELL, P.R.B. et al, (1976) Science, 191, 1050-1051 RYAN, U.S. et al (1976) Tissue Cell, 8, 125-145). Des méthodes de purification de 1'ECA endotheliale humaine ou animale ont déjà été décrites (notamment dans BULL H.G. et al, (1985)J. Biol. Chem., 260, 2963-2972 t HOOPER, N.M. et al, (1987) Biochem. J., 247, 85-93), et quelques séquences peptidiques de 1'ECA endothéliale d'origine animale ont été publiées (BERNSTEIN, K.E. et al (1988), Kidney Int., 33, 652-655; HARRIS, R.B. et al (1985) J. Biol. Chem., 260, 2208-2211; IWATA, K. et al (1982) Biochem. Biophys. Res. Commun, 107, 1097-1103 t IWATA, K. et al (1983) Arch. Biochem. Biophys., 227, 188-201 ; ST CLAIR, D.K. et al (1986) Biochem. Biophys. Res. Commun, 141, 968-972 ; SOFFER, RL. et al (1987) Clin. Exp. Hyp. A9, 229-234). Quelques essais de clonage de 1'ADN codant pour 1'ECA animale ont été effectués à partir de deux organes riches en ECA, les reins et les poumons, mais aucun acide nucléique complet codant pour 1'ECA animale n'a cependant été décrit ; seuls quelques fragments d'un tel acide nucléique ont été décrits (DELUCA- FLAHERTY, C. et al (1987) Int. J. Peptide Protein Res., 29, 678-684 t BERNSTEIN K.E. et al, (1988 J. Biol. Chem., 263, 11021-11024)). Les quantités d'ARN messager (ARNm) codant pour 1'ECA sont probablement trop faibles dans ces organes pour permettre facilement le clonage d'un ADN complémentaire (ADNc) de cet ARNm. Le clonage de 1'ADN codant pour 1'ECA des cellules endothéliales humaines a été réalisé pour la premiere fois par les auteurs de la présente demande ; la séquence nucléotidique complète de 1'ADN codant pour 1'ECA endothéliale, ainsi que la séquence en acides aminés de cette dernière sont décrits dans l'article de SOUBRIER F. et al paru dans Proc. Natl. Acad. Sci., USA, 85, pp 9386-9390 (1988). Une activité enzymatique du type de celle de 1'ECA a également été mise en évidence dans les testicules humains et animaux (J.J. LANZILLo et al, J. Biol. Chem., 260, pp 14938-14944 (1985)). Toutefois, la structure de 1'ECA des testicules humains (ou encore désignée par l'expression ECA testiculaire) n'est pas connue à l'heure actuelle, et aucune séquence de 1 'ADN codant pour cette ECA testiculaire n'a été décrite jusqu'à maintenant. S.N. ROY et al affirment en 1988 dans un article de Biochem. Biophys. Res. Commun. 155 : 678-684, avoir isolé des clones mais ils ne donnent pas la séquence des clones. La présente invention a précisément pour objet le clonage et le séquençage de l'acide nucléique codant pour 1'ECA testiculaire humaine ; ce travail a été réalisé a partir de deux banques d'ADN complémentaires d'ARNm provenant de testicules humains et de sondes nucléotidiques correspondant à 1'ECA endothéliale. Les techniques utilisées pour le clonage et le séquençage de l'acide nucléique selon l'invention seront plus particulièrement décrites dans la description détaillée de l'invention. I1 sera fait référence dans ce qui suit, aux figures dans lesquelles - la figure 1 représente l'acide nucléique ainsi que le polypeptide, déduit de ce dernier, correspondant 1'ECA testiculaire humaine - la figure 2 représente les positions respectives des acides nucléiques des quatre clones utilisés pour la détermination de l'acide nucléique codant pour 1'ECA testiculaire humaine. Une étude approfondie de l'acide nucléique de l'invention, ainsi que du polypeptide déduit à partir de ce dernier et correspondant à llECA testiculaire humaine, conduit aux observations suivantes - la séquence composite de l'ADNc de 1'ACE testiculaire est de 2477 nucléotides, est délimitée par les nucléotides correspondant aux positions 1 et 2477 de la figure 1. La séquence nucléotidique, délimitée par les nucléotides situés aux positions 29 et 2224 de la figure 1, contient une phase de lecture ouverte codant pour un polypeptide de 732 acides aminés.Cette séquence nucléotidique est constituée d'une séquence d'ADN délimitée par les nucléotides correspondant aux positions 29 et 91 de la figure 1 susceptible coder pour un peptide signal de 21 acides aminés, et d'une séquence d'ADN délimitée par les nucléotides situés aux positions 92 et 2224 de la figure 1 susceptible de coder pour une protéine mature de 711 acides aminés - la séquence nucléotidique délimitée par les nucléotides situés aux positions 228 et 2224 de la figure 1 est identique à celle délimitée par les nucléotides situés aux positions 1944 à 3940 codant pour les 665 derniers acides aminés de llECA endothéliale humaine et représentée sur la figure 2 de l'article de SOUBRIER et al sus-mentionné ; ; - la séquence nucléotidique délimitée par les nucléotides situés aux positions 29 et 229 codant pour les 67 premiers acides aminés de la pro-enzyme testiculaire, et plus particulièrement la séquence délimitée par les nucléotides situés aux positions 92 et 229 codant pour pour les 46 premiers acides aminés de l'enzyme testiculaire mature, sont particulièrement spécifiques de 1'ECA testiculaire - le polypeptide comprenant une séquence His-Glu-Met Gly-His correspondant aux acides aminés situés aux positions 414 à 418 de la figure 1, pourrait constituer une partie du site actif de 1'ECA testiculaire. La présente invention concerne donc tout acide nucléique caractérisé en ce qu'il comprend toute ou partie de la séquence nucléotidique de la figure 1, cette partie comprenant elle-même toute ou partie de la séquence nucléotidique délimitée par les nucléotides situés aux positions 29 et 229 de la figure 1, et en ce qu'il code pour un polypeptide - suceptible d'être reconnu par des anticorps polyclonaux ou monoclonaux reconnaissant spécifiquement tout peptide issu de la séquence peptidique délimitée par les acides aminés situés aux positions 1 à 67 de la figure 1, - et, le cas échant, capable d'hydrolyser l'angiotensine I et/ou les kinines, notamment la bradykinine, ou tout acide nucléique ne se distinguant du précédent au niveau de sa séquence nucléotidique que par des substitutions de nucléotides n'entraînant pas la modification de la séquence en acides aminés du susdit polypeptide dans des conditions propres à lui faire perdre les susdites propriétés. L'invention concerne plus particulièrement tout acide nucléique comprenant la séquence d'ADN délimitée par les nucléotides situés aux positions 29 et 2224 de la figure 1, et codant pour la pré-ECA testiculaire humaine (ou pro-enzyme) de 732 acides aminés ; les 21 premiers acides aminés du côté N-terminal représentent le peptide signal, et les 711 acides aminés restant représentent 1'ECA testiculaire humaine nature. L'invention concerne également tout acide nucléique comprenant la séquence d'ADN délimitée par les nucléotides situés aux positions 92 et 2224 de la figure 1, et codant pour 1'ECA testiculaire humaine mature. Parmi les acides nucléiques conformes a l'invention, on citera notamment celui comprenant une séquence d'ADN s'étendant entre, d'une part, un nucléotide situé entre les positions 1 a 92 et, d'autre part, un nucléotide situé entre les positions 229 å 2224 de la figure 1. L'invention a plus particulièrement pour objet tout acide nucléique comprenant la partie de la séquence nucléotidique de la figure 1 qui est spécifique de 1'ECA testiculaire, à savoir tout acide nucléique contenant la séquence nucléotidique s'étendant entre, d'une part, le nucléotide situé à la position 29, et, d'autre part, le nucléotide situe à la position 227 de la figure 1, ou tout acide nucléique contenant une séquence issue de cette dernière. A ce titre, l'invention concerne également - tout acide nucléique comprenant une séquence d'ADN d'environ 15, et de préférence 45, à 201 nucléotides, issue de la séquence nucléique s'étendant entre le nucléotide situé à la position 29 et le nucléotide situé à la position 227 de la figure 1, - tout acide nucléique comprenant une séquence d'ADN d'en2viron 15, et de préférence 45, à 135 nucléotides, issue de la séquence nucléique s'étendant entre le nucléotide à la position 92 et le nucléotide situé a la position 227 de la figure 1. L'invention concerne aussi les acides nucléiques dérivés de ceux sus-mentionnés, et dont les séquences nucléotidiques sont modifiées dans les limites autorisées par la dégénérescence du code génétique, dès lors que les polypeptides codés par ces acides nucléiques conservent soit une structure primaire identique, soit leurs propriétés immunologiques,et, le cas échéant enzymatiques. De telles modifications non limitatives conduisent par exemple a des acides nucléiques variants qui se distinguent des acides nucléiques ci-dessus - par addition et/ou - suppression d'un ou de plusieurs nucléotides et/ou - modification d'un ou de plusieurs nucléotides. L'invention a plus particulièrement pour objet tout acide nucléique présentant la caractéristique de s'hybrider spécifiquement avec l'acide nucléique représenté sur la figure 1, notamment dans les conditions définies ci-après - dénaturation de i'acide nucléique (lorsqu'il est sous forme d'ADN double brin) susceptible de s'hybrider avec celui de la figure 1, avant sa fixation sur le support, défini ci-dessous, par traitement à l'aide d'une solution alcaline (0,5 M NaOH), suivie d'un passage à pH neutre. - traitement de préhybridation du support (filtre de nitrocellulose ou membrane de nylon), sur lequel est fixé l'acide nucléique susceptible de s'hybrider avec celui de la figure 1, à 50-C pendant 3 heures avec une solution ayant la composition suivante : 25 mM KPO4, pH 7,4 ; 5 x SSC ; 5 x Denhardt's ; 50 g/ml d'ADN de sperme de- saumon soniqué ; 0,1 % Sodium Dodecyl Sulfate (SDS ou NaDod SO), - remplacemçnt de la solution de pré-hybridation au contact du support par une solution tampon ayant une composition identique à celle de pré-hybridation indiquée ci-dessus, (plus éventuellement 10 % de Dextran), et comprenant l'acide nucléique de la figure 1 en tant que sonde marquée, notamment de maniere radioactive, et préalablement dénaturée par un traitement à 90'C pendant 3 minutes, - -incubation pendant 12 heures à 60 C, - lavages successifs avec les solutions suivantes 2 2 x SSC, pendant 30 minutes à 60'C à 2 reprises, . 1 x SSC, 0,1 % SDS pendant 1 à 2 fois 15 minutes à 659C. I1 est a rappeler que la composition de la solution de Denhardt est la suivante : 1 % ficoll, 1 t polyvinylpyrrolidone, 1 % BSA (albumine de sérum de boeuf), et que 1 x SSC est une solution 0,15 M de NaCl et 0,015 M de citrate de sodium, pH 7. L'invention concerne également tout acide nucléique présentant la caractéristique de s'hybrider spécifiquement avec l'acide nucléique de la figure 1 dans des conditions non stringentes reprenant les caractéristiques essentielles des conditions stringentes définies ci-dessus, sauf pour ce qui concerne la température qui est de 40-C dans les conditions non stringentes, et les lavages successifs qui, dans les conditions non stringentes, sont réalisés à 1 'aide de 2 x SSC avec ou sans SDS à 45C pendant 15 minutes à 2 reprises. L'invention a également pour objet tout acide nucléique susceptible de s'hybrider avec les acides nucléiques issus de celui de la figure 1 tels que définis ci-dessus, ou leurs séquences complémentaires, notamment dans les conditions d'hybridation décrites ci-dessus. L'invention vise également les sondes nucléotidiques susceptibles de s'hybrider avec la totalité de l'acide nucléique de la figure 1, ou avec tout fragment tel que défini ci-dessus de cet acide nucléique, ainsi qu'avec 1'ARN messager codant pour 1'ECA testiculaire et avec le gène humain responsable de l'expression de 1'ECA testiculaire, notamment dans les conditions d'hybridation définies ci-dessus, ou leurs séquences complémentaires. I1 va de soi que les conditions d'hybridation stringentes ou non stringentes, définies ci-dessus constituent des conditions préférées pour l'hybridation, mais ne sont nullement limitatives et peuvent être modifiées sans affecter pour autant les propriétés de reconnaissance et d'hybridation des sondes et des acides nucléiques sus-mentionnés. Les conditions salines et de température, au cours de l'hybridation et du lavage des membranes, peuvent être modifiées dans le sens d'une plus grande ou d'une plus faible stringence sans que la détection de l'hybridation en soit affectée. Par exemple, il est possible d'ajouter un pourcentage variable de formamide pour abaisser la température au cours de l'hybridation. L'invention concerne également le polypeptide de la figure 1 correspondant à 1'ECA testiculaire humaine, ainsi que tous les polypeptides, codés par les fragments d'ADN sus-mentionnés issus de l'acide nucléique de la figure 1, susceptibles d'être reconnus par des anticorps polyclonaux ou monoclonaux reconnaissant spécifiquement tout peptide issu de la séquence peptidique délimitée par les acides aminés situés aux positions 1 å 67 de la figure 1, et plus particulièrement celle délimitée par les acides aminés situés aux positions 22 a 67 de la figure 1, et, le cas échéant, de posséder une activité enzymatique du type de celle de 1'ECA testiculaire Parmi les polypeptides sus-mentionnés, on distinguera notamment - le polypeptide s'étendant entre les acides aminés correspondant aux positions 1 et 732 de la figure 1 - le polypeptide s'étendant entre les acides aminés correspondant aux positions 22 et 732 - le polypeptide dont la séquence peptidique est délimitée par les acides aminés situés aux positions 1 et 67 de la figure 1, - le polypeptide dont la séquence peptidique est délimitée par les acides aminés situés aux positions 22 et 67 de la figure 1, - le polypeptide caractérisé par la séquence peptidique d'environ 5 & 67 acides aminés, issue de la séquence peptidique délimitée par les acides aminés situés aux positions 1 et 67 de la figure 1, - le polypeptide caractérisé par la séquence peptidique d'environ 5 å 45 acides aminés, issue de la séquence peptidique délimitée par les acides aminés situés aux positions 22 et 67 de la figure 1. Les polypeptides précédents peuvent être modifiés dès lors qu'ils conservent les propriétés biochimiques ou immunologiques ou pharmacologiques définies précédemment. Par exemple, et de façon non limitative, des polypeptides dans le cadre de l'invention peuvent se distinguer des polypeptides définis ci-dessus ; - par addition et/ou - suppression d'un ou plusieurs acides aminés et/ou - modification d'un ou de plusieurs acides aminés, sous réserve que les propriétés biochimiques ou immunologiques ou pharmacologiques comme indiqué cidessus soient conservées. On conçoit que l'homme de métier dispose de la possibilité d'identifier, voire de sélectionner ceux des polypeptides de séquences plus courtes qui entrent dans le champ de l'invention. A titre de l'un des moyens généraux lui permettant de procéder á cette identification, on mentionnera, par exemple, le traitement du polypeptide de la figure 1 avec une protéase clivant le polypeptide sus-mentionné dans un site peptidique choisi, soit dans une région Nterminale, soit dans une région C-terminale, suivi de la séparation du fragment N-terminal ou du fragment Cterminal du restant dudit polypeptide, ce "restant" étant alors testé pour ses propriétés de reconnaissance par un anticorps monoclonal ou polyclonal dirigé contre un peptide issu de la séquence peptidique délimitée par les acides aminés situés aux positions 22 à 67 de la figure 1, et, le cas échéant, pour son activité enzymatique vis-à-vis de l'angiotensine et/ou de la bradykinine. En cas de réponse positive, l'on aura alors établi que le fragment N-terminal ou C-terminal, ne jouait pas un rôle significatif, sinon essentiel pour la manifestation des propriétés immunologiques et/ou enzymatiques dudit polypeptide. L'opération peut éventuellement être répétée pour autant que l'on dispose d'une protéase susceptible de reconnaître un autre site spécifique proche d'une extrémité Nterminale ou C-terminale du polypeptide restant.La perte par le polypeptide plus petit reconnu des propriétés immunologiques et/ou enzymatiques du fragment plus long dont il était issu peut conduire à l'hypothèse que le dernier fragment séparé jouait un rôle significatif dans la manifestation des propriétés enzymatiques du polypeptide de la figure 1. Une autre variante, plus simple que la précédente, de détection des régions de 1'ECA testiculaire essentielles & la manifestation des activités enzymatiques de cette dernière, peut être basée sur des traitements enzymatiques d'un acide nucléique codant pour 1'ECA testiculaire. Ce traitement est réalisé avant l'incorporation de l'acide nucléique ainsi obtenu, et présumé coder pour un polypeptide possédant des activités immunologiques et/ou enzymatiques du type de celle de 1'ECA testiculaire, dans le vecteur d'expression utilisé pour la mise en oeuvre d'un procédé de production dudit polypeptide dans l'hôte cellulaire approprié (procédé qui sera plus particuliérement détaillé dans ce qui suit). Ce traitement enzymatique peut alors consister soit en un émondage des extrémités de l'acide nucléique initial (codant par exemple pour le polypeptide de la figure 1 en entier), par exemple par une enzyme exonucléolytique, telle que Bal31, soit par une ou plusieurs enzymes de restriction choisie pour leurs sites de reconnaissance respectifs (le cas échéant aménagés par mutagenèse ponctuelle dirigée) dans la séquence de l'acide nucléique initial, soit par l'addition d'un fragment d'ADN synthétique de jonction entre le site de coupure de l'enzyme de restriction et le début de la région à exprimer.L'acide nucléique tronqué obtenu peut alors être testé, après incorporation dans le vecteur choisi et transformation de l'hôte cellulaire avec le vecteur recombinant obtenu, pour sa capacité à exprimer un polypeptide tronqué correspondant, possédant encore les susdites propriétés immunologiques et/ou enzymatiques ou au contraire ne les possédant plus, d'où la possibilité, comme dans la variante précédente, d'identifier au sein du polypeptide de la figure 1, les séquences jouant un rôle important, sinon essentiel dans la manifestation des propriétés immunologiques et/ou enzymatiques de 1'ECA testiculaire. L'invention a également pour objet tout acide nucléique recombinant contenant tout fragment d'ADN du type sus-indiqué codant pour la pré-ECA testiculaire humaine, ou 1'ECA testiculaire humaine mature, ou encore pour tout polypeptide, susceptible de posséder une activité immunologique et/ou enzymatique du type de celle de 1'ECA testiculaire, associé avec un promoteur et/ou un terminateur de transcription reconnu par les polymérases de la cellule hôte dans laquelle ledit acide nucléique recombinant est susceptible d'être introduit. L'introduction dudit acide nucléique recombinant dans la cellule hôte, est avantageusement réalisée & l'aide de vecteurs, notamment du type plasmide, qui sont aptes a se répliquer dans ladite cellule hôte et à y permettre l'expression de la séquence codant pour l'enzyme. Ledit acide nucléique recombinant peut également être introduit dans la cellule hôte à l'aide d'un vecteur viral (virus recombinant) capable d'infecter ladite cellule hôte, ou à l'aide d'un vecteur rétroviral capable de s'intégrer dans le génome de la cellule hôte, et d'y permettre l'expression du polypeptide codé par un acide nucléique selon l'invention, ce dernier étant sous le contrôle d'un promoteur viral, ou rétroviral, actif dans la cellule hôte. A titre d'exemples de vecteurs utilisables dans le cadre de la présente invention, on citera 'le virus de la leucémie murine de type Moloney (ou M-MuLV) susceptible d'infecter les cellules NIH 3T3, ou le baculovirus utilisé pour infecter les cellules d'insectes. L'invention concerne donc un procédé de production de 1'ECA testiculaire humaine, ou des polypeptides sus-mentionnés issus de 1'ECA testiculaire, qui comprend la transformation des cellules hôtes au moyen des vecteurs sus-indiqués, la mise en culture des cellules hôtes transformées dans un milieu approprié et la récuperation desdits polypeptides soit directement a partir du milieu de culture, lorsque ces derniers y sont secrétés (notamment dans le cas où les polypeptides considérés sont précédés d'une séquence signal lors de -leur synthèse dans la cellule hôte), soit après lyse de la paroi de la cellule hôte dans le cas où les polypeptides ne seraient pas secrétés hors de cette dernière. Les cellules hôtes utilisées pour la mise en oeuvre du procédé sus-mentionné peuvent être des cellules procaryotes, notamment des cellules de E. coli, ou, d'une manière plus avantageuse, des cellules eucaryotes, qui permettent, notamment, d'obtenir des protéines sous leur forme glycosylée et mature (levures, cellules CHO ou autres cellules, ou cellules d'insectes infectées par le baculovirus). L'invention vise également un procédé de préparation des nouveaux polypeptides sus-mentionnés par synthèse qui comprend soit l'addition étape par étape des résidus peptidiques choisis, avec l'addition ou l'élimination de groupes protecteurs quelques des fonctions amino et carboxyle, ou addition de résidus peptidiques choisis afin de produire des fragments, suivie d'une condensation desdits fragments en une séquence en acides aminés appropriée, avec addition ou élimination des groupes protecteurs choisis. L'invention se rapporte également à des anticorps spécifiques dirigés contre les polypeptides ci-dessus En particulier, l'invention vise des anticorps polyclonaux ou monoclonaux dirigés contre les séquences peptidiques sus-mentionnées. Un mode d'obtention d'anticorps polyclonaux contre un peptide dérivé de la séquence de 1'ECA testiculaire est brièvement résumé ci-après - le peptide dont la taille minimum est d'environ 5 à 15 acides amines, est couplé * soit à la sérum albumine bovine ou à la KLH (hemocyanine de Keyhole Limpets (Megathura crenulata)) si le peptide contient une cystéine, qui peut être ajoutée de façon artificielle à la séquence naturelle. Cette cystéine sera auparavant activée par le SPDP = Ester N-Hydroxysuccinimide de l'acide (pyridyldithio-2)-3 propionique, * soit & la KLH ou & la LPH (hemocyanine de l'hemolymphe de Limulus polyhemas) par l'intermédiaire de la benzoquinone; * soit å la LPH par le glutaraldéhyde, * soit å la LPH par le carbodiimide, - le peptide couplé est ensuite injecté au lapin dans un volume égal d'adjuvant de Freund et dans le coussinet plantaire des pattes postérieures des lapins. Lors de la première injection, c'est de l'adjuvant de Freund complet qui est utilisé. Ensuite c'est de l'adjuvant incomplet, - une injection de rappel est pratiquée toutes les 3 & 4 semaines, - entre chaque injection, un prélèvement de sang est effectuée pour mesurer le titre des anticorps (le titre des anticorps est établi en mesurant la dilution pour laquelle le peptide qui a servi aux injections et qui est marqué radioactivement est lié å l'anticorps à 50%). Les anticorps monoclonaux sus-mentionnés peuvent être produits par la technique des hybridomes dont le principe général est rappelé ci-apres. Dans un premier temps, on inocule un des polypeptides ci-dessus à un animal choisi (par exemple souris de type Biozzi ou Balb/C), dont les lymphocytes B sont alors capables de produire des anticorps contre ce polypeptide. Le protocole d'injection comprend par exemple trois injections dont la première faite avec de l'adjuvant de Freund complet. Les animaux peuvent recevoir une injection I.V. du polypeptide quelques heures avant l'isolement des cellules de la rate. Les cellules spléniques de l'animal injecté sont ensuite fusionnées avec les cellules "immortelles" de la lignée myélomateuse, selon la méthode décrite par DI PAULI (DI PAULI R, and W.C., RASCHKE, (1978), in Current topics in Microbiology and Immunology, vol. 81,. F. MELCHERS, M. POTTE, and N.L.WARNER, editors, Springer-Verlag, Berlin, 37-39), à l'aide du polyéthylène glycol. Les cellules ayant fusionnées (hybridomes) sont ensuite remises en culture et sélectionnées dans un milieu hypoxanthine-aminoptérine-thymidine. A partir du mélange hétérogénie des cellules ainsi obtenu, on réalise alors une sélection des cellules capables de produire un anticorps particulier et de se multiplier indéfiniment. Les hybridomes produisant des anticorps sont ensuite clonés et sous-clonés, au mieux gracie å un trieur de cellules. Les hybridomes sont ensuite réinjectés dans le péritoine d'animaux, notamment de souris Balb/C traitées par le pristane. Les ascites sont ensuites testées pour la présence d'anticorps et les immunoglobulines présentes dans les ascites sont purifiées sur colonne d'affinité, notamment sur protéine-A Sépharose. Des anticorps mono ou polyclonaux peuvent également être produits contre la molécule entiere d'ECA. Parmi les polypeptides utilisés pour la fabrication des anticorps polyclonaux ou monoclonaux sus-mentionnés, on mentionnera plus particulièrement les polypeptides spécifiques de 1'ECA testiculaire å savoir ceux délimités par les acides aminés situés aux positions 1 et 67, ou 22 et 67 de la figure 1, ou encore ceux possédant au moins 5 acides aminés issus de la séquence peptidique délimitée par les acides aminés situés aux positions 1 et 67 de la figure 1. L'invention concerne également une méthode de dépistage, ou de dosage, in vitro de 1'ECA testiculaire humaine, ou d'un produit dérivé de 1'ECA testiculaire tel que les polypeptides sus-mentionnés dans un prélèvement biologique susceptible de les contenir. Une telle méthode de dépistage selon l'invention, peut etre réalisée soit & l'aide des anticorps monoclonaux sus-mentionnés, soit & l'aide des sondes nucléotidiques décrites ci-dessus. L'invention a plus particulièrement pour objet l'utilisation des anticorps polyclonaux ou monoclonaux obtenus & partir du polypeptide délimité par les acides aminés situés aux positions 1 et 67, ou celui délimité par les acides aminés situés aux positions 22 et 67, ou encore celui issu de la séquence peptidique délimitée par les acides aminés situés aux positions 1 et 67 de la figure 1, et reconnaissant spécifiquement ces polypeptides, pour la mise en oeuvre d'une méthode de dépistage, ou de dosage, in vitro, de 1'ECA testiculaire humaine. L'invention concerne également l'utilisation des sondes nucléotidiques décrites ci-dessus, notamment celles s'hybridant avec les séquences nucléiques codant pour les polypeptides spécifiques de 1'ECA testiculaire humaine décrits ci-dessus, pour la mise en oeuvre de la méthode de dépistage ou de dosage sus-mentionnée. Le prélèvement biologique sus-mentionné est effectué soit dans des tissus fluides, tels que le sang, soit dans des organes, ce dernier type de prélèvement permettant notamment d'obtenir des coupes fines de tissus sur lesquelles les anticorps ou les sondes sus-mentionnés sont ultérieurement fixés. La méthode de dosage selon l'invention, procédant par l'intermédiaire des anticorps sus-mentionnés comprend notamment les étapes suivantes : - la mise en contact d'un anticorps reconnaissant spécifiquement 1'ECA testiculaire ou un polypeptide dérivé de 1'ECA testiculaire selon l'invention, avec le susdit prélèvement biologique dans des conditions permettant la production éventuelle d'un complexe immunologique formé entre 1'ECA testiculaire ou produit qui en est dérivé et l'anticorps sus-mentionné ; - la détection å l'aide de tout moyen approprié du susdit complexe immunologique. Avantageusement, les anticorps utilisés pour la mise en oeuvre d'un tel procédé sont marqués notamment de manière enzymatique ou radio-active. Une telle méthode selon l'invention peut notamment être réalisée suivant la méthode ELISA (enzyme linked sorbent assay) qui comprend les étapes suivantes - fixation d'une quantité prédéterminée d'anticorps sur un support solide, notamment å la surface d'un puits d'une microplaque - addition du prélèvement biologique (sous forme liquide) sur ledit support - incubation pendant une temps suffisant pour permettre la réaction immunologique entre lesdits anticorps et 1'ECA testiculaire ou produit qui en est dérivé sus-mentionné - élimination des parties non fixées du prélèvement biologique et iavage du support solide (en particulierdes puits de la microplaque) ;; - addition d'une immunoglobuline marquée par une enzyme susceptible d'activer un substrat spécifique de cette enzyme, - addition du substrat spécifique de l'activité enzymatique libérée lors de la réaction immunologique précédente - détection, å l'aide detout moyen approprié, de la dégradation du substrat par l'enzyme ; et - corrélation de la quantité d'enzymes libérées & la concentration d'ECA humaine initialement présente dans le prélèvement biologique. Selon un autre mode de réalisation de la méthode de dosage de l'invention, les anticorps sus-mentionnés ne sont pas marqués et la détection des complexes immunologiques formés entre les polypeptides et lesdits anticorps est réalisée & l'aide d'une immunoglobuline marquée reconnaissant lesdits complexes. La méthode de dosage selon l'invention peut également être réalisée par une technique immunoenzymatique suivant un mecanisme de compétition entre les polypeptides susceptibles d'être contenus dans le prélèvement biologique, et des quantités prédéterminées de ces mêmes polypeptides, vis-å-vis des anticorps sus-mentionnés. Dans ce dernier cas, les polypeptides de l'invention en quantité prédéterminée sont avantageusement marqués a l'aide d'un marqueur enzymatique. L'invention ne se limite nullement aux modes de réalisation decrits ci-dessus pour le dosage in vitro des polypeptides de l'invention, ce dosage pouvant être réalisé å l'aide de toute autre méthode immunologique appropriée. L'invention concerne également une méthode de dépistage, ou de dosage, in vitro d'un acide nucléique codant pour toute ou partie de 1'ECA testiculaire, réalisée à partir d'un prélèvement biologique susceptible de contenir ledit acide nucléique, caractérisée en ce qu'elle comprend - la mise en contact d'une sonde nucléotidique décrite ci-dessus avec le susdit prélèvement biologique dans des conditions permettant la production éventuelle d'un complexe d'hybridation formé entre l'acide nucléique et ladite sonde - la détection å l'aide de tout moyen approprié du susdit complexe d'hybridation. Selon un mode de réalisation de l'invention, le prélèvement biologique sus-mentionne est, préalablement & la mise en oeuvre du dépistage, traité de manière à ce que les cellules qu'il contient soient lysées et, éventuellement, en ce que le matériel génomique contenu dans lesdites cellules soit fragmenté & l'aide d'enzymes de restriction du type EcoRI, BamHI etc..., ou que les ARN en soient isolés, notamment selon la méthode décrite dans THOMAS, P.S. (1983) Methods Enzymol., 100, 255-266. Avantageusement, les sondes nucléotidiques de l'invention sont marquées, notamment par l'incorporation d'un (ou plusieurs) nucléotide soit radio-actif soit couplé à un haptene permettant sa détection par un anticorps, ce dernier étant conjugué å une enzyme dont l'activité est facilement détectable (par exemple la phosphatase alcaline). Les ADN, ou ARN, issus du prélèvement biologique sont placés sur un support approprié, notamment sur un filtre de nitrocellulose ou autre, par exemple membrane de nylon, sur lequel sont ensuite additionnées les sondes sus-mentionnées. Selon un autre mode avantageux de réalisation du procédé sus-mentionné de l'invention, des coupes histologiques sont réalisées A partir du susdit prélèvement biologique et les sondes nucléotidiques de l'invention sont mises en contact direct avec des coupes histologiques pour la détection des acides nucléiques de l'invention par hybridation in situ. L'invention concerne également l'application de la méthode de dépistage ou de dosage de 1'ECA testiculaire sus-mentionnée aux diagnostic in vitro de pathologies spécifiques des testicules (en particulier au niveau des cellules germinales), notamment de tumeurs de testicules (encore appelés séminomes), de la maturation des cellules germinales mâles, des hypofertilîtés et stérilités masculines. Dans le cadre de diagnostic de l'hypofertilité et de la stérilité masculine, la méthode sus-mentionnée est avantageusement réalisée & partir du sperme, ou de cellules germinales ou du plasma séminal isolés á partir du sperme, ou & partir de biopsie testiculaire. L'invention a également pour objet des nécessaires ou kits pour la mise en oeuvre des méthodes de dépistage, ou de dosage, in vitro sus-mentionnés. A titre d'exemple, de tels kits comprennent notamment: - une quantité déterminée d'un des anticorps polyclonaux ou monoclonaux sus-mentionnés susceptible de donner lieu & une réaction immunologique spécifique avec 1'ECA testiculaire ou avec un des polypeptides dérivés de 1'ECA testiculaire selon l'invention - et/ou une quantité déterminée d'ECA testiculaire ou un polypeptide susceptible de donner lieu & une réaction immunologique avec les anticorps susmentionnés ; - avantageusement, un milieu approprié à la formation d'une réaction immunologique entre 1'ECA ou les polypeptides de l'invention et les anticorps susmentionnés - avantageusement, des réactifs permettant la détection des complexes immunologiques produits lors de la réaction immunologique sus-mentionnée. Dans le cadre de la mise en oeuvre d'une méthode de dépistage in vitro utilisant des sondes nucléotidiques, les kits utilisés comprennent par exemple - une quantité déterminée d'une des sondes nucléotidiques sus-mentionnées susceptible de donner lieu b une réaction d'hybridation avec un des acides nucléiques sus-mentionnés codant pour llECA testiculaire ou un polypeptide dérivé de 1'ECA testiculaire selon l'invention - avantageusement, des réactifs permettant la détection des complexes d'hybridation produits lors de la réaction d'hybridation sus-mentionnée. L'invention concerne également l'utilisation du polypeptide de la figure 1 ou de tout fragment peptidique approprié issu de ce dernier, pour la conception de nouveaux inhibiteurs de- 1'ECA humaine, plus puissants et/ou spécifiques de cette dernière que ne le sont les actuels inhibiteurs de 1'ECA. L'invention a également pour objet une méthode de détection ou de dosage, d'un inhibiteur de 1'ECA, ou de quantification de son pouvoir inhibiteur, qui comprend la mise en contact du polypeptide de la figure 1, ou de tout fragment peptidique issu de ce dernier et possédant une activité enzymatique du type de celle de 1'ECA, avec ledit inhibiteur, et la détermination, pour ces inhibiteurs de la constante de dissociation tKi] et de la concentration nécessaire à un inhibition de 50% (1C50)de l'enzyme. L'invention concerne également l'utilisation du polypeptide de la figure 1, ou de tout fragment de ce dernier, tel que décrit ci-dessus, capable d'hydrolyser les kinines, notamment la bradykinine, dans le traitement des maladies inflammatoires, ou infectieuses, de la pancréatite aigue, et plus généralement de maladies où une libération de kinines dans l'organisme pourrait jouer un rôle pathogène. A ce titre, l'invention concerne plus particulièrement des compositions pharmaceutiques pour le traitement des maladies indiquées ci-dessus, caractérisée par l'association de tout ou partie du polypeptide de la figure 1, capable d'hydrolyser les kinines, notamment la bradykinine, avec un véhicule pharmaceutiquement acceptable. La présente invention a également pour objet l'utilisation des sondes nucléotidiques de l'invention, capables de s'hybrider avec le gene responsable de l'expression de 1'ECA testiculaire humaine dans les conditions décrites ci-dessus, pour la détermination des differentes formes alléliques du gene susmentionné. L'invention a également pour objet toute séquence nucleotidique d'environ 15 à environ 30 nucléotides issue de la séquence nucléotidique de la figure 1, ou une séquence complémentaire de cette dernière, ou encore une séquence 'd'environ 15 à 30 nucléotides susceptible de s'hybrider avec ladite séquence d'environ 15 à 30 nucléotides issue de la figure 1, et l'utilisation de telles séquences en tant qu'amorces permettant l'amplification génique de toute ou partie de la séquence nucléotidique de la figure 1, notamment selon la méthode d'amplification décrite dans la demande de brevet européen n 86/302.298.4 du 27/03/1986. Ces amorces oligonucléotidiques sont particulièrement utiles dans le cadre de la synthèse de 1'ECA testiculaire par voie du génie génetique telle que décrite ci-dessus, dont les différentes etapes sus-mentionnées sont précédées par une étape d'amplification du gêne codant pour 1'ECA testiculaire préalablement å l'étape de transformation des cellules hôtes. L'invention concerne également une méthode de détection in vitro de 1'ARNm codant pour 1'ECA testiculaire, telle que décrite ci-dessus, comprenant une étape préalable d'amplification de toute ou partie de cet ARNm, le cas échéant, isolé des autres constituants cellulaires, à l'aide d'un ou de plusieurs, couple d'amorces telles que définies cidessus. Des caractéristiques supplémentaires de l'invention apparaîtront encore au cours de la description qui suit du clonage de l'acide nucléique codant pour 1'ECA testiculaire humaine, ainsi que des sondes utilisées pour ce clonage, étant entendu que cette description ne saurait être interprétée comme tendant à restreindre la portée des revendications. I - SEQUENCAGE DE L'ADN COMPLEXENTAIRE DE L'ECA TESTICULAIRE HUMAINE Une banque d'ADNc de testicules humains amorcée avec de l'oligo(dT), construite dans le phage #gtll (clontech laboratories Inc.) a été criblée en utilisant la sonde décrite ci-dessous. Les hybridations avec les phages ont été effectuées selon la méthode de Benton WD et Davis RW Science (WASHINGTON) 1977, 196, 180-182. Plus précisément les hybridations ont été effectuées dans une solution constituée de 6XSSC (lXSSC correspond à NaCl 150 mM, citrate de sodium 15 mM), 0,1 % de NaDodSO4, tampon NaP04 50 mM & pH 6,8, 0,1 mg/ml d'ADN dénaturé de sperme de saumon & 65'C. La séquence utilisée comme sonde est contenue dans le bactériophage > 19-22 et représente les 3248 derniers nucléotides de la séquence d'ADN complémentaire (position 691 & 4024), telle que décrite dans l'article de SOUBRIER F. et al, sus-mentionné. Elle a été choisie car elle hybride avec 1'ARN messager de 1'ECA dans le testicule humain. La séquence clonie de 1'ADN de 1'ECA endothéliale a été utilisée comme sonde, par marquage statistique à l'aide de la DNA polymérase I de E.coli et d'amorces oligonucléotidiques, selon la méthode décrite par FEINBERG AP et al (1983) Anal. Biochem., 132, 6-13. En utilisant l'alpha [32P), deoxycytidine triphosphate, d'activité spécifique 3000cies/mmole, la sonde a une activité spécifique de 2 & 8 x 109 cpm/ g d'ADN.La concentration de la sonde radioactive dans la solution d'hybridation des filtres est de 106 cpm/ml. Les filtres ont ensuite été lavés en condition de forte stringence (lavage final en 0,1 x SSC, 0,1 % NaDodS04) à 68'C pendant 30 minutes. Le criblage de 2 x 106 clones de la banque a permis d'isoler 17 clones positifs. Parmi ceux-ci , deux clones positifs ont été isolés. Les fragments d'ADN insérés dans les phages recombinants ont été purifiés et insérés dans le site EcoRI du plasmide pBluescript (Sratagene). La séquence des insertions a été obtenue soit directement sur 1'ADN double brin des plasmides, soit en obtenant de 1'ADN simple brin en infectant les cultures à l'aide du phage helper K07. La détermination de la séquence nucléotidique de ces clones a été effectuée par la méthode de Sanger (SANGER, F. et al (1977), Proc. Natl. Acad. Sci., USA, 74, 5463-5467) en utilisant soit 1'ADN polymérase de klenow, soit 1'ADN polymérase de T7 modifiée (Sequenase, US Biochemical). Quelques régions ont été séquencées en utilisant à la place de la déoxyguanosine tri-phosphate (dGTP), le déoxyinosine tri-phosphate (dITP) ou le deaza-déoxyguanosine tri-phosphate (7deaza dGTP). L'électrophorèse des fragments marqués par le (535) dATP a été pratiquée sur gel d'urée- polyacrylamide. Les séquences ont été déterminées en synthétisant des oligomères de proche en proche toutes les 350 paires de base environ qui ont servi d'amorces échelonnées le long de la séquence. Le clone ihtlo contient une séquence d'une longueur de 2217 nucléotides et qui s'étend de la position 260 à 2477 de la séquence du cDNA testiculaire portée sur la figure 1. Ce clone s'étend dans la région 3' de 1'ARN messager jusqu'à la séquence de polyadénylation et comprend une courte séquence poly(A). Le clone Ahtl6, d'une longueur de 2263 nucléotides, correspond s la région du cDNA testiculaire située entre la position 50 et 2313 de la figure 1. Un oligomer d'une longueur de 22 nucléotides, a été synthétisé et utilisé pour cribler à nouveau la banque afin d'obtenir. des clones correspondant & la région la plus 5' de 1'ARN messager.La séquence de cet oligomer est contenue dans la séquence du clone Ahtl6 (position 59 s 80). L'oligomer a été marqué au -[32P-) adénosine triphosphate ATP (activité spécifique 5000cies/mmole) å l'aide de la T4 polynucléotide kinase. L'activité spécifique de la sonde est de 5 x 106 cpm/pmole. Les filtres ont été criblés dans les mêmes conditions que précisées au dessus å part les modification suivantes : la température d'hybridation était de 60C et la température de lavage de 65 C dans une solution 2 X SSC. Ce criblage a permis d'isoler le clone #ht341, d'une longueur de 2,2 kb, qui s'étend en 5' jusqu'au nucléotide 31 du cDNA testiculaire de 1'ACE. De manière à obtenir 1'ADN complémentaire correspondant à l'extrémité 5' de 1'ARN messager codant pour 1'ECA testiculaire, une autre banque de donnée d'ADNc a été construite en utilisant 5 g d'ARN isolé à partir de tissu testiculaire humain obtenu lors d'une intervention chirurgicale. La banque d'ADN complémentaire a été construite selon la méthode de Gübler et Hoffman (Gene (1983), 25, 263-269), en utilisant deux amorces. D'une part une amorce spécifique de 1'ARN messager de 1'ECA, déterminé par la séquence des clones précédemment obtenus. I1 s'agit d'un oligomer de 17 bases (ATH17), complémentaire d'une séquence localisée en position 228-244 de la figure 1. La seconde amorce correspond & l'oligo-d(T)12-18 mers (pharmacia). Les ADN complémentaires double-brin ont été synthétises puis insérés dans le phage AgtlO coupé par l'enzyme EcoRI selon la méthode de Koenig et al (Koenig, M et al,(1987) Cell, 50, 509-517). Les phages recombinants (1 x 106 phages recombinants) ont été criblés à l'aide de 1'oligomer TH16, marqué comme précédemment. Les conditions de criblage de la banque sont identiques à celles décrites plus haut avec la même sonde. Parmi les clones positifs obtenus, le clone Art221, d'une longueur de 244 paires de base a été séquencé. I1 contient la partie la plus 5' de 1'ARN messager codant pour 1'ECA testiculaire. La séquence de 1'ARN messager testiculaire, telle qu'elle peut être déduite de la séquence nucléotidique composite du cDNA testiculaire obtenue à partir des 4 clones, est longue de 2477 nucléotides. Elle présente une séquence nucléotidique identique å celle de 1'ARN messager endothélial, en 3' de la position 228 du cDNA testiculaire. En 5' de cette position les deux ARN messagers testiculaires et endothéliaux divergent et la séquence spécifique testiculaire déterminée est de 228 nucléotides. Depuis le premier codon ATG jusqu'au codon stop, il existe une phase ouverte codant pour 732 acides aminés.L'analyse de la séquence peptidique déduite de la séquence nucléotidique montre qu'il existe après la méthionine de départ de la traduction, un peptide qui présente les caractéristiques d'un signal peptide et en utilisant le programme décrit par VON HEIJNE (Nucleic Acids Research, (1986), 14, 4683-4690) pour la prédiction des sites coupure d'un signal peptide, le site de coupure du signal peptide se situerait entre l'acide aminé en position 21 et celui en position 22. A la suite de cette séquence signal, la séquence peptidique spécifique de 1'ECA testiculaire est très riche en serine et en thréonine, sites potentiels de glycosylation, et ce type de séquence est évocateur de O-glycosylation groupée. Les caractéristiques enzymatiques de 1 'enzyme testiculaire étant identiques & celle de l'enzyme endothéliale, notamment en ce qui concerne le Km, la Vmax, et Kcat sur l'angiotensine I, la comparaison de sa structure avec celle de l'enzyme endothéliale apporte des informations intéressantes concernant les relations structure activité dans la molécule d'ECA. En effet, l'enzyme endothéliale est constituée de deux grands domaines, très homologues entre eux. Chacun de ces domaines contient une courte séquence d'acides aminés consensus du site actif des métallopeptidases å zinc tels que la thermolysine, la collagénase ou ltendopeptidase neutre. L'enzyme de conversion testiculaire ne contient que le domaine carboxyterminal de 1'ECA, endothéliale, ce qui semble indiquer que ce domaine 9 lui seul porte les structures responsables de activité enzymatique. Une autre hypothèse serait que l'enzyme testiculaire agit sous forme d'un dimere, cependant l'enzyme testiculaire native de lapin testée en condition non dénaturante par centrifugation en gradient de densité a bien un poids moléculaire inférieur & celui de 1'ECA endothéliale. REVENDICATIONS 1. Acide nucléique caractérisé en ce qu'il comprend la séquence nucléique de la figure 1, ou une partie de cette séquence, cette partie comprenant elle-même toute ou partie de la séquence nucléique délimitée par les nucléotides situés aux positions 29 et 229 de la figure 1, et en ce qu'il code pour un polypeptide, ce polypeptide étant - susceptible d'être reconnu par des anticorps polyclonaux ou monoclonaux reconnaissant spécifiquement tout peptide issu de la séquence peptidique délimitée par les acides aminés situés aux positions 1 å 67 de la figure 1, - et, le cas échant, capable d'hydrolyser l'angiotensine I et/ou les kinines, notamment la bradykinine, ou tout acide nucléique ne se distinguant du précédent au niveau de sa séquence nucléotidique que par des substitutions de nucléotides n'entraînant pas la modification de la séquence en acides aminés du susdit polypeptide dans des conditions propres à lui faire perdre les susdites propriétés. 2. Acide nucléique caractérisé en ce qu'il est susceptible de s'hybrider avec l'acide nucléique représenté sur la figure 1, dans les conditions d'hybridation stringentes suivantes dénaturation de l'acide nucléique (ADN) susceptible de s'hybrider avec celui de la figure 1, par traitement 8'l'aide d'une solution alcaline (0,5 M NaOH), suivie d'un passage à pH neutre, - traitement de préhybridation du support (filtre de nitrocellulose ou membrane de nylon), sur lequel est fixé l'acide nucléique représenté sur la figure 1, i 50iC pendant 3 heures avec- une solution ayant la compositibn suivante : 25 mM KPO4, pH 7,4 ; 5 x SSC ; 5 x Denhardt's ; 50 pg/ml d'ADN de sperme de saumon soniqué ; 0,1 % .Sodium Dodecyl Sulfate (SDS ou NaDod SO4-) - remplacement de la solution de pré-hybridation au contact du support par une solution tampon ayant une composition identique à celle de pré-hybridation indiquée ci-dessus, (plus éventuellement 10 % de Dextran), et comprenant l'acide nucléique de la figure 1 en tant que sonde marquée, notamment de manière radioactive, et préalablement dénaturée par un traitement & 90vC pendant 3 minutes, - incubation pendant 12 heures à 60 C, - lavages successifs avec les solutions suivantes . 2 x SSC, pendant 30 minutes å 60iC 60C & 2 reprises, . 1 x SSC, 0,1 % SDS pendant 1 à 2 fois 15 minutes & 65 C. 3. Acide nucléique caractérisé en ce que qu'il est susceptible de s'hybrider avec acide nucléique de la figure 1 dans des conditions non stringentes reprenant les caractéristiques essentielles des conditions stringentes définies dans la revendication 2, sauf pour ce qui concerne la température qui est de 40C dans les conditions non stringentes, et les lavages successifs qui, dans les conditions non stringentes, sont réalisés & 1 'aide de 2 x SSC avec ou sans SDS å 45 C pendant 15 minutes à 2 reprises. 4. Acide -nucléique selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il comprend une séquence d'ADN délimitée par les nucléotides situés aux positions 92 et 2224 de la figure 1, codant pour 1'ECA testiculaire humaine mature. 5. Acide nucléique selon la revendication 4, caractérisé en ce que ladite séquence d'ADN codant pour 1'ECA testiculaire humaine mature est précédée par une 'séquence d'ADN délimitée par les nucléotides situés aux positions 29 et 91 de la figure 1, cette dernière codant pour un peptide signal de 21 acides aminés. 6. Acide nucléique selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il comprend une séquence d'ADN s'étendant entre, d'une part, le nucléotide situé entre les positions 1 à 92 et, d'autre part, le nucléotide situé entre les positions 229 & 2224 de la figure 1. 7. Acide nucléique selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il comprend une séquence d'ADN d'environ 15 à 201 nucléotides, issue de la séquence nucléique s'étendant entre le nucléotide situé & la position 29 et le nucléotide situé & la position 229 de la figure 1. 8. Acide nucléique selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il comprend une séquence d'ADN d'environ 15 & 135 nucléotides, issue de la séquence nucléique s'étendant entre le nucléotide situé å la position 92 et le nucléotide situé & la position 229 de la figure 1. 9. Polypeptide codé par l'acide nucléique selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il comprend toute ou partie de la séquence peptidique délimitée par les acides aminés situés aux positions 1 å 732 de la figure 1, et en ce qu'il est - suceptible d'être reconnu par des anticorps polyclonaux ou monoclonaux reconnaissant spécifiquement tout peptide issu de la séquence peptidique délimitée par les acides aminés situés aux positions 1 à 67 de la figure 1, - et, le cas échant, capable d'hydrolyser l'angiotensine I et/ou les kinines, notamment la bradykinine. 10. Polypeptide selon la revendication 9, caractérisé par la séquence peptidique délimitée par les acides aminés situés aux positions 22 et 732 de la figure 1. 11. Polypeptide selon la revendication 9, caractérisé par la séquence peptidique délimitée par les acides aminés situés aux positions 1 et 67 de la figure 1 12. Polypeptide selon la revendication 6, caractérisé par la séquence peptidique délimitée par les acides aminés situés aux positions 22 et 67 de la figure 1. 13. Polypeptide selon la revendication 9, caractérisé par la séquence peptidique d'environ 5 å 67 acides aminés, issue de la séquence peptidique délimitée par les acides aminés situés aux positions 1 et 67 de la figure 1, 14. Polypeptide selon la revendication 9, caractérisé par la séquence peptidique d'environ 5 à 45 acides amines, issue de la séquence peptidique délimitée par les acides aminés situés aux positions 22 et 67 de la figure 1. 15. Acide nucléique caractérisé en ce qu'il comprend une séquence nucléotidique selon 1'une quelconque des revendications 1 à 8 associée avec un promoteur sous le contrôle duquel la transcription de ladite séquence est susceptible d'être d'effectuée et, -le cas échéant, une séquence d'ADN codant pour des signaux de terminaison de la transcription. 16. Vecteur recombinant, notamment plasmide recombinant, ou virus recombinant, capable de transformer, ou d'infecter, une cellule hôte appropriée, notamment une cellule eucaryote, ledit vecteur contenant un acide nucléique selon l'une quelconque des revendications 1 à 8 sous le contrôle d'éléments de régulation permettant l'expression de ce fragment d'ADN dans la cellule hôte, notamment d'un promoteur reconnu par les polymérases de ladite cellule hôte. 17. Procédé de production de 1'ECA testiculaire humaine, mature ou non, ou d'un polypeptide issu de 1'ECA testiculaire humaine selon l'une quelconque des revendications 9 à 15, ce procédé comprenant la transformation de cellules hôtes au moyen du vecteur selon la revendication 16, la mise en culture des cellules hotes transformées dans un milieu de culture approprié et la récupération de l'enzyme å partir de ces cellules ou du milieu de culture. 18. Anticorps polyclonal ou monoclonal, caractérisé en ce qu'il est dirigé contre un polypeptide selon l'une quelconque des revendications 9 à 15. 19. Sonde nucléotidique caractérisée en ce qu'elle est constituée par une séquence nucléotidique susceptible de s'hybrider avec toute ou partie de l'acide nucléique selon l'une quelconque des revendications 1 å 8, dans les conditions définies dans la revendication 2 ou la revendication 3, ou toute sonde nucléotidique ne se distinguant de la précédente au niveau de sa séquence nucléotidiqué que par des substitutions de nucléotides n'entraînant pas la modification des propriétés d'hybridation de ladite sonde avec l'acide nucléique selon l'une quelconque des revendications 1 i 8. 20. Méthode de dépistage, ou de dosage, in vitro d'une ECA ou produit ayant in vivo les propriétés de 1'ECA, et, plus particulièrement, de 1'ECA testiculaire humaine, dans un prélèvement biologique susceptible de la contenir, caractérisée en ce qu'elle comprend : - la mise en contact d'un anticorps selon la revendication 18, avec le susdit prélèvement biologique dans des conditions permettant la production éventuelle d'un complexe immunologique formé entre 1'ECA ou produit qui en est dérive et l'anticorps sus-mention né - la détection du susdit complexe immunologique. 21. Méthode de dépistage, ou de dosage, in vitro d'une ECA ou produit ayant in vivo les propriétés de 1'ECA, et, plus particulièrement, de 1'ECA testiculaire humaine dans un prélèvement biologique susceptible de la contenir, caractérisée en ce qu'elle comprend - la mise en contact d'une sonde nucléotidique selon la revendication 19, avec le susdit prélèvement biologique dans des conditions permettant la production éventuelle d'un complexe d'hybridation formé entre la sonde et l'acide nucléique sus-mentionnés - la détection du susdit complexe d'hybridation. 22. Méthode de dépistage in vitro selon la revendication Z0 ou 21, appliquée au diagnostic in vitro de la maturation des cellules germinales mâles humaines, des hypofertilités, et des stérilités masculines, ou encore des tumeurs testiculaires (ou séminomes). 23. Nécessaire ou kit pour la mise en oeuvre d'une méthode de dépistage in vitro selon les revendications 20 et 22 comprenant - une quantité déterminée d'un anticorps selon la revendication 18 susceptible de donner lieu & une réaction immunologique avec un polypeptide i détecter selon l'une quelconque des revendications 9 à 15 : - avantageusement, un milieu approprié à la formation d'une réaction immunologique entre le polypeptide et 1' anticorps sus-mentionnés ; - avantageusement, des réactifs permettant la détection des complexes immunologiques formés entre le polypeptide et 1' anticorps lors de la susdite réaction immunologique. 24. Nécessaire ou kit pour la mise en oeuvre d'une méthode de dépistage in vitro selon les revendications 21 et 22 comprenant - une quantité déterminée d'une sonde nucléotidique selon la revendication 19, susceptible de donner lieu A une réaction d'hybridation avec un acide nucléique selon l'une quelconque des revendications 1 9 8 ; - avantageusement, un milieu approprié å la formation d'une réaction d'hybridation entre 1' acide nucléique et la sonde sus-mentionnée 1 - avantageusement, des réactifs permettant la détection des complexes d'hybridation formés entre l'acide nucléique et la sonde lors de la susdite réaction d'hybridation. 25. Compositions pour le traitement de maladies inflammatoires .ou infectieuses, notamment de la pancréatite aigue, et des maladies où les kinines jouent une rôle pathogene, caractérisées par l'association d'un polypeptide selon l'une quelconque des revendications 9 à 15, avec un véhicule pharmaceutiquement acceptable