Brevet FR2657612A1 — publié le 19910802

La présente invention a pour objet un procédé d'extraction et/ou de prépurification sélectives de protéines contenues dans des produits lactés tels que le lait, le colostrum, le lactosérum ou le sérum du colostrum, que ces produits soient entiers, écrémés, ou sous quelque forme que ce soit et en particulier concentrée ou pulvérulente Plus particulièrement ce procédé permet l'extraction sélective d'alphalactalbumine, de bétalactoglobuline et d'immunoglobulines et autres, ainsi que la prépurification, notamment, de protéines mineures On notera que les compositions des différents produits lactés sont extrêmement différentes de l'un à l'autre et que, par exemple le colostrum, c'est-à-dire le lait des premiers jours après une naissance, est particulièrement riche en certaines protéines et en particulier en immunoglobulines, essentiellement de la classe G. De nombreuses protéines que l'on peut ainsi extraire présentent des propriétés intéressantes dans de nombreux secteurs économiques Par exemple l'alphalactalbumine et la bétalactoglobuline (qui fait également partie des albumines) possèdent des propriétés fonctionnelles telles que le pouvoir moussant et émulsifiant ou gélifiant et constituent des additifs alimentaires recherchés Les propriétés de ces additifs sont d'autant mieux respectées que les protéines sont plus pures Ces protéines possèdent également, par exemple, un pouvoir nutritionnel et peuvent être utilisées dans la fabrication de laits maternisés Les propriétés immunisantes des immunoglobulines déjà mentionnées conduisent à des applications en particulier en biotechnologie et dans la pharmacopée vétérinaire. I 1 convient également de rappeler qu'une albumine est généralement soluble dans des solutions salines diluées ainsi que dans l'eau et dans une solution saturée de sulfate d'ammonium à 50 % et qu'elle n'est pas précipitable dans d'autres solutions aqueuses telles que celles de chlorure de sodium ou de sulfate de magnésium Cependant une albumine est thermocoagulable. Les globulines sont solubles dans des solutions salines diluées, mais elles précipitent dans une solution saturée de sulfate d'ammonium à 50 % ou encore de sulfate de zinc L'alphalactalbumine a une mobilité électrophorétique moyenne en solution alcaline ou neutre; les bétalactoglobulines et l'albumine sérobovine ont une mobilité électrophorétique plus forte et les immunoglobulines une mobilité électrophorétique plus faible Par ailleurs le lactosérum contient, entre autres, des métalloprotéines telles que la transferrine et la lactoferrine qui est une glycoprotéine fixant deux atomes de fer par molécule Si dans ce qui suit, on focalise les applications du présent procédé sur les immunoglobulines, l'alphalactalbumine et la bétalactoglobuline qui représentent des applications particulièrement remarquables de ce procédé, on notera qu'il peut s'appliquer à la prépurification et/ou à l'extraction de la lactoferrine ou éventuellement d'enzymes comme la lactopéroxydase et le lysozyme On citera également la sérumalbumine et en particulier l'albumine sérobovine ou ASB et les protéoses peptones qui sont des glycoprotéines de faible poids moléculaire (de 4 000 à 22 000) solubles dans l'eau, non thermocoagulables. Dans le lactosérum de vache, à titre indicatif, on peut donner les concentrations suivantes PROTEINE CONCENTRATION POIDS MOLECULAIRE MOYENNE MOYEN Immunoglobulines 0,6 g/l 140 000 à 960 000 Alphalactalbumine 1,2 g/l 13 000 à 15 500 Bétalactoglobuline 2,8 g/l 18 000 à 40 000 Sérumalbumine 0, 25 g/l 60 000 à 80 000 Protéoses Peptones 0,6 g/i 4 000 à 22 000 Comme précédemment mentionné, les proportions de ces diverses protéines peuvent varier énormément selon le produit de départ; ainsi la concentration des immunoglobulines dans le colostrum de vache peut dépasser 100 g/l dans les premières heures Néanmoins les trois premières protéines indiquées au tableau ci-dessus sont généralement majoritaires. L'extraction sélective de ces différentes protéines est, du fait de leurs applications, une opération industrielle indispensable De nombreux procédés d'extraction ont déjà été proposés dont certains sont utilisés industriellement. Un procédé connu est la thermocoagulation qui consiste à former des agrégats de protéines par élévation de température Cette méthode est simple à mettre en oeuvre mais présente l'inconvénient de dénaturer, au moins partiellement, les protéines De plus l'alphalactalbumine peut être extraite sélectivement, à condition néanmoins de concentrer et d'acidifier préalablement le produit de départ. L'ultrafiltration est une autre technique utilisée en extraction de protéines Elle est particulièrement utilisée dans un but de concentration en protéines solubles mais s'avère très décevante dans sa capacité à séparer sélectivement une protéine En effet la sélectivité résulte d'une cascade d'ultrafiltrations, de mise en oeuvre assez lourde, qui obère le rendement d'extraction et peut réduire les propriétés spécifiques de la protéine extraite. Une séparation sélective peut être obtenue par des techniques de chromatographie, notamment par échange d'ions. En faisant passer le produit de départ dans des colonnes appropriées, il est possible d'extraire avec une très bonne pureté, les différentes protéines du lactosérum et du lait. Néanmoins ce procédé est lourd à mettre en oeuvre et est coûteux tant en investissement qu'en fonctionnement La capacité d'adsorption des protéines solubles par les colonnes est de plus très faible, de l'ordre de 100 mg de protéines par gramme d'échangeur De plus, une haute concentration en lipoprotéines, comme dans le cas du colostrum, conduit à un encrassement des colonnes. Dans d'autres domaines, par exemple dans l'extraction de protéines du plasma, des méthodes par précipitation sont utilisées Néanmoins, jusqu'à présent, aucun agent précipitant satisfaisant n'a été trouvé, qui permettrait une extraction sélective économique simple et non nocive, des protéines du lait, du lactosérum, du colostrum ou d'autres produits lactés. En conclusion et pour résumer, ces techniques d'extraction de l'art antérieur ne présentent pas simultanément les qualités de simplicité, d'efficacité, de sélectivité, de souplesse et de coût souhaitées. La présente invention est relative à un procédé d'extraction et/ou de prépurification présentant l'ensemble de ces qualités, et faciles à mettre en oeuvre. La présente invention a pour objet un procédé d'extraction sélective et/ou de prépurification de différentes protéines et composants voisins (glycoprotéines, pseudoprotéines, protéines conjuguées, notamment) contenus dans des produits lactés y compris le colostrum, par précipitation avec des acides gras Ce procédé est facile à mettre en oeuvre et peu coûteux Comme on le verra par la suite, un procédé plus spécifique conforme à l'invention permet l'extraction sélective et/ou la prépurification d'une ou plusieurs protéines, telles que celles citées cidessus et en particulier l'extraction sélective des trois protéines majeures à savoir l'alphalactalbumine, la bétalactoglobuline et les immunoglobulines, tout en gardant de préférence le même agent précipitant pour l'extraction et/ou la prépurification de protéines, notamment mineures Si elles sont extraites grâce au procédé selon l'invention, les protéines ne sont pas dénaturées et conservent leurs propriétés spécifiques Par ailleurs aucun prétraitement du produit de départ n'est nécessaire. Le procédé conforme à la présente invention permet, entre autres, de traiter un produit lacté qui peut avoir été préalablement concentré par exemple par osmose inverse ou par ultrafiltration, ainsi que mis à l'état déshydraté ou pulvérulent ou lyophilisé ou autre et remis en solution Le traitement de ces produits, plutôt que celui du lactosérum brut, est particulièrement économique, car il opère sur des volumes largement inférieurs Il peut également s'agir de tout produit lacté préalablement déminéralisé, délactosé ou délipidé, par exemple Ils permettent également de traiter le colostrum, ses dérivés et composants. Plus précisément, la présente invention a pour objet un procédé d'extraction et/ou de prépurification de protéines et composants voisins (notamment glycoprotéines, pseudoprotéines et protéines conjuguées) contenus dans des produits lactés, faisant appel à au moins une étape de précipitation, caractérisés en ce qu'ils comprennent au moins une étape de précipitation par addition d'au moins un acide gras, ledit acide gras étant de formule générale CH 3-(CH 2)n- COOH dans laquelle N est un nombre entier au moins égal à 4, et/ou au moins l'un de ses (ou leurs) dérivés et/ou substitués à caractère acide, ledit ou lesdits acides gras ou ledit ou lesdits dérivés ou substitués à caractère acide étant fluide (liquide ou visqueux notamment) à la température de traitement, le ou les acides gras, dérivés ou substitués étant en quantité telle que le rapport r entre leur masse et celle des protéines contenues initialement dans la matière à traiter au moment de l'opération et que l'on veut précipiter est compris entre 0,5 et 4,5, le p H étant acide, chaque étape de précipitation étant suivie d'une étape de séparation de la fraction précipitée et de la fraction liquide, généralement surnageante Le précipité peut être soumis à une ressolubilisation réalisée, selon des modes de réalisation préférés de l'invention, soit par élévation du p H, ce qui peut être effectué par apport alcalin, soit par extraction d'acide gras Cette dernière peut être effectuée par le procédé dit à membrane liquide supportée, tel que décrit dans la demande de brevet français 85 11109 du 19 Juillet 1985, intitulée "Procédé de séparation de protéines et d'acides gras, utilisable dans un procédé de fractionnement industriel de ces protéines". Elle concerne en particulier un procédé d'extraction d'immunoglobulines caractérisé par le fait que le rapport initial r entre la masse du ou des acides gras (et/ou équivalent en acide caprylique tel que défini ci-après) et celle des protéines à précipiter est de 0,5 à 4,5 et le p H de 3 à 6, 5, les immunoglobulines étant récupérées dans la fraction liquide lors d'une étape de séparation. Dans le même esprit, elle concerne, entre autres, un procédé d'extraction d'un mélange d'alphalactalbumine et de bétalactoglobuline caractérisé par le fait que le rapport initial r entre la masse du ou des acides gras (et/ou équivalent en acide caprylique) et celle des protéines solubles à précipiter est de 0,5 à 4,5 et le p H de 3 à 6,5, l'alphalactalbumine et la bétalactoglobuline étant récupérées, lors d'une étape de séparation, dans la fraction précipitée. Elle concerne également un procédé d'extraction sélective de l'alphalactalbumine et de la bétalactoglobuline caractérisé par le fait que le rapport initial r, calculé en équivalent acide caprylique, entre la masse du ou des acides gras, et/ou dérivés et/ou substitués à caractère acide, et celle des protéines présentes à précipiter autres que la bétalactaglobuline et les immunoglobulines est compris entre 0,5 et 4,5 et le p H entre 3 et 6,5, une première séparation permettant de récupérer l'alphalactalbumine dans la fraction précipitée, et la bétalactoglobuline et les immunoglobulines dans la fraction liquide, cette fraction liquide étant reprécipitée, puis soumise à une deuxième séparation permettant de récupérer la bétalactoglobuline dans la fraction précipitée. L'agent précipitant selon l'invention est, comme on l'a mentionné, au moins un acide gras ou certains dérivés, ou substitués à caractère acide, l'acide gras étant de formule générale CH 3-(CH 2)n-COOH, o N est un nombre entier égal ou supérieur à 4 et, selon un mode de réalisation préféré de l'invention, égal ou inférieur à 10 I 1 peut s'agir de monoacides tels que ceux du tableau ci-dessous I 1 peut également s'agir d'acides à plusieurs fonctions comme par exemple l'acide adipique ou hexanedioïque H 00 C-(CH 2)4-COOH ou encore l'acide pimélique ou heptanedioïque HOOC-(CH 2)5-COOH. I 1 peut également s'agir de certains de leurs substitués ou homologues et en particulier d'acides gras monoinsaturés ou diinsaturés, dès lors qu'il est possible de travailler en phase fluide à la température de traitement voulue. La plupart de ces acides sont disponibles sur le marché à faible coût, ils présentent l'avantage d'être facilement éliminés des solutions finales par exemple par ultrafiltration Dans le tableau suivant est énumérée la liste des acides préférés conformément à l'invention: NOM CHIMIQUE NOM COURANT POINT FORMULE DE FUSION Hexanoïque N caproïque -3,4 C CH 3-(CH 2)4-COOH Heptanoïque oenanthique 7,5 C CH 3-(CH 2)5-COOH Octanoique caprylique + 16,7 C CH 3-(CH 2)6COOH Nonanoïque pélargonique + 12,5 C CH 3-(CH 2)7-COOH Décanoïque n caprique + 31,4 C CH 3-(CH 2)8-COOH Undécanoïque undécylique + 28,6 C CH 3-(CH 2)9-COOH Dodécanoïque laurique + 44 C CH 3-(CH 2)10-COOH Le procédé conforme à l'invention fonctionne dans une large gamme de températures, de préférence de 1 à 55 WC, ce qui inclut avantageusement la température ambiante, mais on peut également travailler à une température de 4 à 80 C qui est souvent utilisée industriellement pour la conservation des produits Opérer à température ambiante présente l'avantage de dispenser des frais de refroidissement et de chauffage Néanmoins l'acide gras utilisé doit être, sinon liquide, au moins fluide à la température choisie On remarquera à ce sujet qu'il devrait être possible d'utiliser des acides gras dont le coefficient N de la formule générale ci-dessus, est supérieur à 10 Mais la plupart du temps, ces acides ont des points de fusion supérieurs à 550 C qui sont difficilement compatibles avec la présence d'albumine thermocoagulable; cependant dans les cas o le produit lacté traité contient peu ou pas de composés coagulables, il est possible de travailler avec des acides gras supérieurs tels que l'acide myristique (n= 12), l'acide palmitique (n= 14) , l'acide stéarique (n= 16), l'acide arachidique (n= 18), l'acide béhénique (n= 20) ou encore l'acide lignocérique (n= 22), ces acides ayant des températures de fusion comprises entre 58 et 850 C D'autre part, il serait également possible d'utiliser des acides gras monoinsaturés, tels que par exemple l'acide palmitoléïque ou l'acide oléique, de points de fusion respectifs: -0,50 C et 13,4 WC, ainsi que des acides gras diinsaturés, tels que par exemple l'acide linoléique ou l'acide arachidonique, de points de fusion respectifs: -5 WC et -49,50 C. Comme indiqué précédemment, le procédé peut être mis en oeuvre en utilisant n'importe quel acide gras répondant à la définition donnée, à la condition que l'acide soit liquide à la température choisie Lorsqu'on opère à température ambiante, il est préférable, conformément à l'invention, d'utiliser l'acide caprylique CH 3-(CH 2 > 6-COOH de masse moléculaire 144 dont la température de fusion est de 16,7 WC. Cet acide est facilement disponible sur le marché Lorsqu'on opère à température plus basse par exemple de l'ordre de 4 à C, il est préférable d'utiliser l'acide n-caproïque CH 3- (CH 2)4-COOH de masse moléculaire 116 et dont la température de fusion est de -3,40 C Cet acide est également facilement disponible sur le marché Les conditions de précipitation sont définies principalement par le p H du milieu et la quantité d'acide gras Le p H peut être ajusté, lors des étapes de précipitations et plus généralement lors des diverses opérations, par un simple ajout de base ou d'acide, en utilisant de préférence et respectivement la soude et l'acide acétique facilement disponibles sur le marché et de faible coût La quantité d'acide gras utilisée est déterminée par le rapport initial r entre la masse d'acide gras, ou dérivé ou substitué à caractère acide et celle des protéines initiales à précipiter. La séparation des deux fractions peut être effectuée au moyen d'un procédé classique de séparation tel que la microfiltration, la centrifugation, ou l'essorage La demanderesse préfère néanmoins effectuer une microfiltration à un seuil de coupure de la membrane de l'ordre 0,1 à 1 micromètre et de préférence de 0,45 micromètre. Une ressolubilisation de la fraction précipitée est possible: La ressolubilisation dans le procédé conforme à il l'invention peut notamment être réalisée par addition d'un agent permettant d'élever le p H. Il peut donc s'agir d'une base et l'on utilisera de préférence la soude qui présente les avantages indiqués ci- dessus On peut également assurer cette ressolubilisation par extraction d'acide gras, dérivé ou substitué à caractère acide. Le procédé conforme à l'invention comprennent un certain nombre d'étapes dépendant du nombre de protéines ou groupes de protéines à extraire et/ou à prépurifier, ces étapes pouvant être éventuellement permutées Chaque étape comprend essentiellement une précipitation par addition d'acide gras dans un rapport initial r et à un p H, compris dans des gammes dépendant de la au des protéines à extraire et/ou à prépurifier Cette précipitation est suivie par une séparation des deux fractions permettant de récupérer les protéines à extraire et/ou à prépurifier dans la fraction liquide, et/ou dans la fraction précipitée La fraction précipitée peut également donner lieu à une ressolubilisation Ces étapes peuvent être précédées et/ou suivies d'un ajustement du p H nécessaire, en utilisant de préférence, comme cela à été indiqué ci-dessus, l'acide acétique ou la soude. Comme indiqué plus haut, le procédé conforme à l'invention est compatible avec plusieurs variantes et permet donc l'extraction sélective et/ou la prépurification des protéines isolées ou en groupe, et en particulier des trois protéines considérées ci-dessus comme majeures Les variantes présentent une ou plusieurs précipitations dans des conditions bien spécifiques, les protéines recherchées pouvant se situer soit dans la fraction précipitée, soit dans la fraction liquide. Pour mieux faire comprendre les caractéristiques techniques et les avantages de la présente invention on va en décrire des exemples de réalisation, étant bien entendu que ceux-ci ne sont pas limitatifs quant à leur mode de mise en oeuvre et aux applications qu'on peut en faire On se référera aux cinq figures suivantes qui représentent schématiquement et respectivement des diagrammes d'électrophorèse effectuée sur gel d'agarose à haute résolution. La figure 1 est un diagramme correspondant à l'électrophorèse des protéines d'un lactosérum bovin de départ utilisé dans les deux exemples ci-dessous; La figure 2 est un diagramme correspondant aux immunoglobulines obtenues par le procédé selon l'exemple 1; La figure 3 est un diagramme correspondant au mélange d'alphalactalbumine et de bétalactoglobuline obtenu par le procédé selon l'exemple 1; La figure 4 est le diagramme correspondant au mélange enrichi en bétalactoglobuline obtenu par le procédé selon l'exemple 2. La figure 5 est un diagramme correspondant au mélange enrichi en alphalactalbumine obtenu par le procédé selon l'exemple 2; Les lettres a,b,c,d de toutes ces figures désignent les bandes qui correspondent respectivement à l'albumine sérobovine, à la bétalactoglobuline, à l'alphalactalbumiîï et aux immunoglobulines. EXEMPLE 1. Extraction conjointe d'immunoqlobulines, d'une part, et d'un mélanqe bétalactoq 1 obuline alphalactalbumine, d'autre part. A du lactosérum bovin dont le diagramme d'électrophorèse sur gel d'agarose à haute résolution fait l'objet de la figure 1, on ajoute l'acide caprylique et on ajuste le p H jusqu'à 4,7; on travaille de préférence à 200 C considéré comme température ambiante Le rapport initial r entre la masse d'acide caprylique et celle des protéines présentes dans le lactosérum et que l'on désire précipiter doit être supérieur à 0,5 et de préférence égal à 1,7 et à p H compris entre 3 et 6,5 de préférence de l'ordre de 4,7. Dans ce qui suit lorsqu'on utilise l'acide caprylique comme acide gras, le rapport initial r est celui entre la masse d'acide caprylique et celle des protéines que l'on veut précipiter à partir du mélange initial Si l'on utilise un autre acide gras que l'acide caprylique, on calculera le rapport initial r en remplaçant une molécule de monoacide gras par une molécule d'acide caprylique ou une molécule de diacide gras par deux molécules d'acide caprylique Par exemple, si l'on travaille avec de l'acide caproïque de masse moléculaire 116, on remplacera 116 g de ce monoacide par 144 g d'acide caprylique dans le calcul de r Il s'agit donc en fait d'une équivalence entre acide gras et acide caprylique en terme de -COOH Il en ira de même avec les dérivés et substitués selon le nombre de leurs -COOH. Dans le cas de cet exemple 1, le rapport initial r étant de 1,7, le p H du mélange est ajusté à 4,7 On obtient ainsi une fraction précipitée que l'on sépare de la fraction liquide par centrifugation On obtient ainsi, d'une part, des immunoglobulines contenues dans la fraction liquide et, d'autre part, les autres protéines dans la fraction précipitée On va ressolubiliser cette fraction précipitée, par exemple, à l'aide de soude jusqu'à un p H de l'ordre de 7,0 Cette ressolubilisation n'est pas sélective Par un ajustement du p H vers 5,5 à l'aide, par exemple, d'acide acétique, on peut ensuite réaliser une seconde précipitation, permettant, cette fois-ci, de précipiter sélectivement l'alphalactalbumine et la bétalactoglobuline, par l'acide caprylique Une nouvelle centrifugation permet, de séparer d'une part la fraction liquide et d'autre part la fraction précipitée que l'on peut à nouveau ressolubiliser, soit par retour à un p H de l'ordre de 7, comme le précédent, par addition d'un agent alcalin, soit par extraction d'acide gras dans les conditions définies dans la demande de brevet citée ci-dessus. Le précipité ressolubilisé est un mélange essentiellement composé d'alphalactalbumine et de bétalactoglobuline dont le diagramme d'électrophorèse fait l'objet de la figure 3 En ce qui concerne la fraction liquide séparée lors de la première centrifugation et qui contient essentiellement des immunoglobulines, son diagramme d'electrophorèse fait l'objet de la figure 2 On constate que, à partir du lactosérum de départ qui contient une quantité importante d'alphalactalbumine (c) et de bétalactoglobuline (b), que l'on retrouve largement au diagramme de la figure 1, les immunoglobulines (d) de la figure 1 sont en quantité négligeable dans le mélange d'alphalactalbumine et de bétalactoglobuline de la figure 3, mais représentent l'essentiel de la fraction liquide (figure 2) L'albumine sérobovine fait l'objet sur ces trois figures de la zone (a) dont on retrouve des traces dans le diagramme du mélange alphalactalbumine, bétalactoglobuline (figure 3). EXEMPLE 2. Extraction conjointe d'un mélance enrichi en bétalactoqlobuline, d'une part, et d'un mélanqe enrichi en alphalactalbumine, d'autre part. Comme à l'exemple précédent on part du même lactosérum (diagramme d'électrophorèse de la figure 1) auquel on va ajouter de l'acide caprylique, en travaillant toujours à température ambiante, avec un rapport initial r de l'ordre 2,8 et l'on ajuste le p H à environ 4,0 Il se forme un précipité et l'on centrifuge l'ensemble pour obtenir, d'une part, la fraction précipitée et, d'autre part, la fraction liquide. Le précipité est ressolubilisé, comme à l'exemple 1, soit en ajustant le p H au voisinage de la neutralité, soit par extraction d'acide gras, de dérivé ou de substitué à caractère acide, et l'on obtient un mélange enrichi en alphalactalbumine dont le diagramme d'électrophorèse fait l'objet de la figure 5 La centrifugation a permis de séparer la fraction liquide qui contient donc essentiellement les immunoglobulines et la bétalactoglobuline On ajoute à cette fraction liquide de l'acide caprylique dans un rapport initial r de l'ordre de 2,3, et on ajuste le p H à environ 4,7, ce qui entraîne une précipitation Une deuxième centrifugation permet d'isoler, d'une part, une nouvelle fraction liquide que l'on peut considérer comme non valorisée, tandis que la fraction précipitée séparée, d'autre part, par cette nouvelle centrifugation, est ressolubilisée par retour au voisinage de la neutralité ou par extraction d'acide gras, par les moyens mentionnés plus haut, et l'on obtient ainsi un mélange enrichi en bétalactoglobuline dont le diagramme fait l'objet de la figure 4. Si l'on compare le lactosérum de départ de la figure 1, on constate que pratiquement la totalité de l'alphalactalbumine est passée dans le premier précipité (figure 5) avec des teneurs en bétalactoglobuline et en albumine sérobovine assez faibles, tandis que l'essentiel de la bétalactoglobuline se retrouve dans la fraction précipitée obtenue après la seconde centrifugation (figure 4), le mélange résultant ne présentant que des teneurs extrêmement faibles en albumine sérobovine, en alphalactalbumine et en immunoglobulines. On notera que l'albumine sérobovine peut être séparée des autres fractions aussi bien à l'exemple 1 qu'à l'exemple 2 par une ou plusieurs ultrafiltrations terminales qui opèrent une sélection en fonction de la masse moléculaire d'une part, et du seuil de coupure de la membrane d'autre part, séparant par exemple, d'un côté, l'alphalactalbumine de faible masse moléculaire et, de l'autre, l'albumine sérobovine de masse moléculaire nettement supérieure Des cassettes filtrantes, de 5 à 1 O Ok D par exemple, permettent de réaliser de telles ultrafiltrations Une seconde ultrafiltration peut permettre également une concentration en protéines comme, par exemple, l'alphalactalbumine, le ou les acides gras dérivés ou substitués résiduels étant éliminés. Par ce même procédé, on peut prépurifier et/ou extraire des protéines mineures ou en proportions plus faibles dans le produit de départ Cela présente l'avantage, par rapport aux techniques actuelles d'éviter un grand nombre d'opérations successives pour parvenir à séparer certains composants difficiles à isoler les uns des autres selon les procédés classiques. REVENDICATIONS 1. Procédé d'extraction et/ou de prépurification sélectives de protéines et composants voisins (tels que glycoprotéines, pseudoprotéines, protéines conjuguées) contenus dans des produits lactés sous toutes formes, y compris le colostrum, faisant appel à au moins une étape de précipitation, caractérisé en ce qu'ils comprennent au moins une dite étape de précipitation par addition d'au moins un acide gras de formule générale CH 3-(CH 2)n-COOH dans laquelle N est un nombre entier au moins égal à 4, et/ou dérivé et/ou substitué à caractère acide du ou desdits acides, ledit ou lesdits acides gras et/ou dérivés et/ou substitués à caractère acide étant fluides à la température de traitement, et en quantité telle que le rapport initial r entre sa ou leur masse en équivalent acide caprylique, et celle des protéines contenues dans la matière à traiter initialement et que l'on veut précipiter est compris entre 0,5 et 4,5, le p H étant acide, l'étape de précipitation étant suivie d'une étape de séparation de la fraction précipitée et de la fraction liquide. 2. Procédé selon la revendication 1, caractérisé par le fait que la fraction précipitée est ressolubilisée. 3. Procédé selon la revendication 2, caractérisé par le fait que la fraction ressolubilisée est reprécipitée, par addition d'au moins un acide gras, dérivé ou substitué à caractère acide. 4. Procédé selon l'une des revendications 1 à 2, caractérisé par le fait que ladite fraction liquide est soumise à une seconde précipitation par addition d'au moins un acide gras, dérivé ou substitué à caractère acide. 5. Procédé selon l'une des revendications 1 à 4, caractérisé en ce que la ressolubilisation est effectuée par élévation de p H réalisée par apport alcalin. 6. Procédé selon l'une des revendications 1 à 5, caractérisé en ce que la ressolubilisation est effectuée par extraction d'au moins un acide gras et/ou dérivé et/ou substitué à caractère acide. 7. Procédé d'extraction et/ou de prépurification d'immunoglobulines selon l'une des revendications 1 à 6, caractérisé par le fait que le rapport initial r calculé en équivalent acide caprylique, entre la masse du ou des acides gras et/ou dérivés et/ou substitués à caractère acide, et celle des autres protéines solubles présentes est de 0,5 à 4,5 et le p H de 3 à 6,5, les immunoglobulines étant récupérées dans la fraction liquide lors d'une étape de séparation. 8. Procédé d'extraction et/ou de prépurification d'un mélange d'alphalactalbumine et de bétalactoglobuline selon l'une des revendications 1 à 6, caractérisé par le fait que le rapport initial r, calculé en équivalent acide caprylique, entre la masse du ou des acides gras, et/ou dérivés et/ou substitués à caractère acide, et celle des autres protéines présentes est de 0,5 à 4,5 et le p H de 3 à 6,5, l'alphalactalbumine et la bétalactoglobuline étant récupérées, lors d'une étape de séparation, dans la fraction précipitée. 9. Procédé d'extraction et/ou de prépurification d'alphalactalbumine et de bétalactoglobuline selon l'une des revendications 1 à 6, caractérisé par le fait que le rapport initial r, calculé en équivalent acide caprylique, entre la masse du ou des acides gras, et/ou dérivés et/ou substitués à caractère acide, et celle des protéines présentes à précipiter, autres que la bétalactoglobuline et les immunoglobulines est compris entre 0,5 et 4,5 et le p H entre 3 et 6,5, une première séparation permettant de récupérer l'alphalactalbumine dans la fraction précipitée, et la bétalactoglobuline et les immunoglobulines dans la fraction liquide, cette fraction liquide étant reprécipitée, puis soumise à une deuxième séparation permettant de récupérer la bétalactoglobuline dans la fraction précipitée. 10. Procédé selon l'une des revendications 1 à 9, caractérisé par le fait que la matière traitée est préalablement concentrée par osmose inverse ou par ultrafiltration. 11 Procédé selon l'une des revendications 1 à 10, caractérisé par le fait que la matière à traiter est préalablement déminéralisée et/ou délactosée et/ou délipidée. 12. Procédé selon l'une des revendications 1 à 10, caractérisé par le fait que la matière traitée est à l'état déshydraté ou pulvérulent ou lyophilisé, puis remise en solution. 13. Procédé selon l'une des revendications 1 à 12, caractérisé par le fait que la matière traitée est du colostrum. 14 Procédé selon l'une des revendications 1 à 13, caractérisé par le fait que les différentes opérations sont effectuées à une température supérieure à 16,70 C en utilisant comme acide gras l'acide caprylique. 15. Procédé selon l'une des revendications 1 à 14, caractérisé par le fait que les différentes opérations sont effectuées à la température ambiante. 16. Procédé selon l'une des revendications 1 à 13, caractérisé par le fait que les différentes opérations sont effectuées à une température comprise entre 40 C et 8 WC. 17 Procédé selon la revendication 16 caractérisé par le fait que l'acide gras utilisé est l'acide hexanoique. 18. Procédé selon l'une des revendications 1 à 17 caractérisé par le fait que les ajustements de p H sont effectués à l'acide acétique pour baisser le p H et à la soude pour l'élever. 19. Procédé selon l'une des revendications 1 à 18 caractérisé par le fait que la séparation de la fraction précipitée et de la fraction liquide est effectuée par microfiltration à un seuil de coupure de membrane compris entre 0,1 et 1 micromètre, préférentiellement 0,45 micromètre. 20. Procédé selon l'une des revendications 1 à 19, caractérisé par le fait que l'agent utilisé pour la ressolubilisation de la fraction précipitée récupérée après séparation est la soude. 21. Procédé selon l'une des revendications 1 à 20, caractérisé par le fait qu'il comporte une étape terminale d'ultrafiltration de la ou des fractions récupérées, le seuil de coupure de la membrane d'ultrafiltration étant de 5 à 100 k D.