Brevet FR2637612A1 — publié le 19900413

i SEQUENCES DE NUCLEOTIDES CODANT POUR UNE PROTEINE A ACTIVITE UREASIQUE __________-_________________________________________ L'invention a pour objet des séquences de nucléotides codant pour une uréase telle qu'exprimée naturellement chez Campvlobacter p lori et ses appli- cations biologiques, notamment pour la détection de C.pvlori chez l'homme ou dans l'environnement. C.pDvlori est une bactérie à gram négatif retrouvée à ce jour exclusivement à la surface de la muqueuse de la partie antrale de l'estomac chez l'homme, et plus particulièrement autour des lésions et des cratères des ulcères gastriques et duodénaux. 25% de la population est porteuse de C.p lori: 8% présentent une maladie ulcéreuse, 9% souffrent de dyspepsie non- ulcéreuse et 8% sont porteurs asymptomatiques. Tous les C.pvlori isolés et décrits à ce jour, possèdent les trois propriétés suivantes: Les bactéries produisent une uréase dotée d'une grande activité. Elles adhèrent très fortement aux cellules épithéliales de la muqueuse gastrique, cette propriété se traduisant in vitro par une très forte adhésion aux cellules Hela. Les C.Pvlori produisent et libèrent une enzyme présentant une activité protéolytique conduisant à la dégradation du mucus et donc à un affaiblissement de la barrière naturelle protégeant la muqueuse gastrique. La détection de C.Pvlori in situ, chez l'homme et dans l'environnement et l'étude de son pou- voir pathogène - elle est considérée comme responsable des gastrites actives chez l'homme - se heurtent toutefois aux difficultés de culture de cet organisme. Sa croissance est très lente (6 à 7 jours sur milieu gélosé au sang), et doit s'effectuer dans des conditions de microaérophilie, l'oxygène de l'air étant toxique. La recherche de moyens de détection de cette bactérie a conduit les inventeurs à identifier les gènes responsables chez C.Pnvlori de la production d'uréase. La détermination de la séquence de nucléo- tide d'un fragment intragénique a permis de disposer d'un outil utilisable comme sonde de détection pour l'i- dentification spécifique des C.pvlori. L'invention a donc pour but de fournir de nouvelles séquences de nucléotides capables de coder pour des protéines à activité uréasique telle qu'expri- mée chez C.pvlori. Elle a également pour but de fournir des fragments de cette séquence utilisables comme sondes de détection de C.pvlori. L'invention vise, en outre, à fournir une protéine à activité uréasique telle qu'exprimée chez C.PDvlori, de pureté élevée, et des fragments de cette protéine. La séquence de nucléotides selon l'inven- tion est caractérisée en ce qu'elle comprend au moins une partie d'une séquence codant pour une protéine à activité uréase telle qu'exprimée chez C.vPlori. L'invention a plus particulièrement pour objet une séquence de nucléotides capable de s'hybrider avec des gènes codant pour une protéine à activité uréase telle qu'exprimée chez C.1vlori, dans les conditions suivantes: 68'C, 6 x SSC (1 x SSC est constitué de 0,15M de NaCl et 0, 015M de citrate de sodium, pH7), en milieu Denhardt (1% Ficoll, 1% polyvinylpyrrolidone, 1% de sérum albumine de boeuf). Selon un autre aspect de l'invention, la séquence de nucléotides est caractérisée en ce qu'elle porte l'information requise pour la production d'une protéine à activité uréase ou de ses fragments, capables de former un complexe-immunologique avec des anticorps dirigés respectivement contre une protéine d'activité uréase telle qu'exprimée chez C.Pvlori ou contre des fragments de cette dernière. La séquence selon l'invention est égale- ment caractérisée en ce qu'elle comprend au moins une partie d'un fragment d'environ 8kb correspondant au fragment de restriction EcoRI (ClaI, BamHI)-PstI (Hind III). La carte de restriction enzymatique de ce fragment est représentée sur la figure 2. Une séquence plus spécialement préférée comprend au moins une partie d'un fragment d'environ 4,2kb ( 5%) délimité par les nucléotides d'extrémité situés respectivement à une distance d'environ O,55kb en amont du site H2 représenté sur la figure 2, et d'environ 0,7 kb en aval du site B1 représenté sur la figure 2. Lés séquences constituées par ce fragment portent l'information nécessaire pour l'expression d'une protéine à activité uréase telle qu'exprimée naturel- lement chez C.Pvlori. L'expression de ces séquences peut inter- venir chez tout autre microorganisme capable d'exploiter à son profit l'information portée par ces séquences, notamment chez une souche de Camp lobacter naturellement déficiente en gènes codant pour la production d'une protéine à activité uréase (ou encore souche de camvpylobacter uréase). Selon encore un autre aspect, l'invention vise une séquence recombinante comprenant l'une des séquences définies ci-dessus, le cas échéant associée à un promoteur capable de contrôler la transcription de la séquence et une séquence d'ADN codant pour des signaux de terminaison de la transcription. Les séquences de nucléotides de l'inven- tion sont caractérisées en ce qu'elles sont capables de s'hybrider avec une sonde formée à partir de la séquence présentant: \ \ -l'enchaînement (I) de nucléotides suivant g 3' ou l'enchaînement (tI) de nucléotides suivant ' l'O 3' - ou les enchaînements de nucléotides complénentaires respectivement des enchaînements (I et (II) sus-mentionnes. Des séquences de nucléotides selon l'in- vention, sont caractérisées en ce qu'elles comprennent les enchaînements de nucléotides définis ci-dessus ou sont constituées au moins par une partie de ces enchaînements. Il va de soi que les bases des séquences de nucleotides considérées peuvent être dans un ordre différent de celui trouvé dans les gènes et/ou que ces bases peuvent être, le cas échéant, substituées, dès lors qu'une sonde élaborée à partir de telles séquences donne une réponse caractéristique et non équivoque quant à la capacité de reconnaître la présence de gènes codant pour la protéine à activité uréase de C.Pvlori. Toute séquence de nucléotides hybridable avec celle des enchaînements de nucléotides sus-men- tionnés telle qu'obtenue par transcription enzymatique inverse de l'ARN correspondant ou encore par synthèse chimique, entre également dans le cadre de l'invention. L'invention concerne également une séquence de nucléotides correspondant, selon le code génétique universel, à au moins une partie de la sé- quence (III) en acides aminés suivante: LYsqyV alLuGlyValTy.Gl/Ly Se rLyAnAaLuuSSerzGln&laIleValAanrAsnMtSrAsnI4uAla LeuLyl uTyrLeuLysSezGlnAspharuGluLuLyHRisCysAlaIleGlyAspLysPheValSeG luCysetAsgLs AlaAsnPhIGlyGlyGluGlnSerGlyHi s lellPheSerAspTyrAlaLysThrrGlyAspGlyi@uValCysaluGlnvalSer Ala&uV&TLuGluSerLysLeu L'invention a également pour objet une séquence de nucléotides correspondant, selon le code génétique universel, à au moins une partie de la séquence en acides aminés (IV) suivante: A. -litAe'z l leLya lZeyAuZleG o. Ci lpn TlshzGlyAupAlaxGyG11yAl5 GMlyI1IhtblaXVlaIlySrzubAlaTbz9zoIle L'invention se rapporte également aux vec- teurs recombinants d'expression et de clonage, capables de transformer une cellule hâte appropriée, comportant au moins une partie d'une séquence de nucléotides telle que définie ci-dessus sous le contrôle d'éléments de régulation permettant son expression. Des vecteurs recombinants préférés renferment au moins une partie de la séquence d'environ 4,2kb évoquée plus haut. Les souches de microorganismes transfor- mées entrent également dans le cadre de l'invention. Ces souches comportent l'une des séquences de nucléotides définies ci-dessus ou encore un vecteur recombinant tel que défini précédemment. La souche E.coli S17-1 déposée le 16 Août 1988 sous le n' I795 à la Collection Nationale de Culture de Microorganismes (C.N.C.M.) porte le plasmide pILL590 de 16,3kb environ qui comprend le fragment de restriction d'environ 8kb EcoRI(ClaI,BamHI)-PstI (Hind III) évoqué plus haut. L'invention vise en outre une protéine présentant une activité uréase du type de celle exprimée naturellement chez C.Pvlori ainsi que les fragments peptidiques de cette protéine. La protéine de l'invention, et ses frag- ments, correspondent selon le code génétique universel, aux séquences de nucleotides définies ci-dessus, en particulier à au moins une partie de la séquence d'environ 4,2 kb. La protéine de l'invention est également caractérisée en ce qu'il s'agit d'une protéine telle qu'obtenue par transformation de cellules hôtes au moyen d'un vecteur recombinant comme défini ci-dessus, mise en culture, dans un milieu approprié, des cellules hôtes transformées et récupération de la protéine à partir de ces cellules ou directement à partir du milieu de culture. La production d'uréase ou de fragments de cette dernière par ce procédé, fait également partie de l'invention. La protéine de l'invention et ses frag- ments, qui peuvent être également obtenus par synthèse chimique, présentent avantageusement un degré de pureté élevé et sont utilisés pour former, selon les techniques classiques, des anticorps polyclonaux. De tels anticorps polyclonaux, ainsi que les anticorps monoclonaux capables de reconnaître spé- cifiquement la protéine ci-dessus et ses fragments sont également visés par l'invention. Les séquences de nucléotides définies ci- dessus sont obtenues selon les techniques classiques du génie génétique par clonage et identification des gènes responsables de la synthèse d'une protéine à activité uréase chez C.p lori. L'invention vise également les appli- cations biologiques des séquences de nucléotides, des protéines correspondantes et des anticorps monoclonaux ou polyclonaux. Ces applications comprennent l'élabora- tion, à partir de fragments intragéniques, de sondes pour la détection de C.Pylori. Cette élaboration comprend, notamment, la dénaturation des séquences double-brin pour obtenir une séquence monobrin util- isable en tant que sonde. Les essais réalisés avec de tels fragments pour détecter la présence éventuelle de séquences complémentaires chez divers Campylobacter et chez des microorganismes appartenant à des genres différents ont mis en évidence la grande spécificité de ces fragments. L'invention vise donc des sondes de détection caractérisées en ce qu'elles comprennent au moins une partie d'une séquence de nucléotides définie ci-dessus. 1 1 Toute sonde ne se distinguant de la précédente, au niveau de sa séquence de nucléotides, que par des substitutions ou altérations de nucléotides n'entraînant pas de modification de ses propriétés d'hybridation avec le génome de C.tPlori, entre dans le cadre de l'invention. Le fragment d'ADN utilisé comme sonde comporte un nombre de nucleotides suffisant pour obtenir la spécificité requise et la formation d'un hybride stable. Il est possible d'utiliser des fragments atteignant plusieurs kb, des résultats de haute spécifi- cité étant cependant également obtenus avec des frag- ments plus courts d'environ 25 à 40 nucléotides. Des sondes appropriées pour ce type de détection sont avantageusement marquées par un élément radio-actif ou tout autre groupe permettant sa recon- naissance à l'état hybridé avec la préparation renfer- mant l'ADN à étudier. Selon les techniques classiques, ces sondes sont mises en contact avec un échantillon biologique renfermant des bactéries, ou directement avec ces bactéries ou leurs acides nucléiques, dans des conditions autorisant l'hybridation éventuelle de la séquence de nucléotides de la sonde avec une séquence complémentaire, éventuellement contenue dans le produit testé. On peut, par exemple, mettre en oeuvre la méthode d'hybridation sur taches. Cette méthode comporte après dénaturation de l'ADN préalablement obtenu à partir de bactéries provenant de biopsies antrales, le dépôt d'une quantité aliquote de cet ADN sur des mem- branes de nitrocellulose, l'hybridation de chaque membrane dans les conditions usuelles avec la sonde et la détection, de manière classique, de l'hybride formé. On peut aussi utiliser une méthode d'hy- bridation sur réplique, selon la technique de Southern. Cette méthode comprend la séparation électrophorétique en gel d'agarose des fragments d'ADNs engendrés après traitement de l'ADNs par des enzymes de restriction, le transfert après dénaturation alcaline sur des membranes appropriées et leur hybridation avec la sonde dans les conditions usuelles. Il n'est pas toujours nécessaire de procéder à l'expression préalable de l'ADN. Il suffit que l'ADN soit rendu accessible à la sonde. La détection pour l'identification spécifique des C.Pvlori peut être également réalisée par des techniques d'amplification de l'ADN (PCR). Ces techniques sont décrites en particulier dans les brevets US 4683202 et 4683195 au nom de Cetus Corporation. Pour la mise en oeuvre de ces techniques, on utilise deux amorces, avantageusement d'environ une vingtaine de nucléotides comprises dans l'une des séquences de nucléotides définies ci-dessus et distantes d'environ 200 à 250 nucléotides. L'une des séquences est capable de se lier à une séquence de nucléotides d'un des brins du fragment d'ADN à amplifier, cette séquence étant située au niveau d'une extrémité de ce fragment (par exemple l'extrémité 5'); l'autre séquence est capable de se lier à une séquence de nucléotides du deuxième brin du fragment d'ADN à amplifier, cette dernière séquence étant située au niveau de l'extrémité de ce fragment opposée à celle sus-mentionnée (cette dernière extrémité étant encore désignée par extrémité 3' dans l'exemple proposé). Des amorces préférées sont comprises dans la séquence de nucléotides du fragment de restriction H3-H4 de la figure 2, et sont distants d'environ 200 à 250 nucléotides. Il s'agit, en particulier, des fragments respectivement à chaque extrémité de cette séquence de restriction HindIII-HindIII. Un procédé de dépistage in vitro de la présence éventuelle de C.pylori dans un échantillon biologique comprehd les étapes suivantes: éventuellement l'amplification préalable de la quantité d.e séquences de nucléotides susceptibles d'être contenues dans l'échantillon, à l'aide d'amorces, telles que décrites ci-dessus, susceptibles respectivement de se lier, d'une part à l'extrémité 5' d'un brin de ladite séquence de nucléotides et d'autre part, à l'extrémité 3' de l'autre brin de ladite séquence de nucléotides, - la mise en contact de l'échantillon biologique en question avec une sonde nucléotidique selon l'invention, dans des conditions permettant la production d'un complexe d'hybridation formé entre la sonde et la sé- I5 quence de nucléotides, - la détection du complexe d'hybridation. L'invention fournit ainsi des outils permettant de détecter rapidement C. P lori, in situ, et dans l'environnement, avec une grande spécificité, sans avoir à pratiquer de cultures. De tels outils de détection sont particulièrement utiles pour étudier le réservoir naturel de ces bactéries, les méthodes de transmission, de circulation et de contamination. De plus, dans le diagnostic in vitro pratiqué sur les biopsies, l'uti- lisation de ces sondes permet un gain de temps considé- rable par rapport aux techniques actuelles qui nécessi- tent de plus une technologie ne pouvant être réalisée que dans des services spécialisés, à savoir, des tech- niques bactériologiques ou utilisant la microscopie électronique. Des résultats reproductibles ont été obtenus en utilisant comme sonde intragénique le fragment d'environ 8kb défini ci-dessus. Compte tenu de leur spécificité à l'égard de C.pvlori, ces sondes constituent également un outil de grand intérêt. Pour étudier le pouvoir pathogène de C.Pylori de façon à prévenir l'infection, il est ainsi possible d'étudier le rôle joué par C.pylori dans le développement des maladies ulcéreuses et d'identifier les déterminants génétiques qui semblent impliqués dans le pouvoir pathogène de cet organisme en vue de créer in vitro des mutants isogéniques de C. Pvlori, c.a.d. des bactéries modifiées génétiquement dans chacun des déterminants qui semblent jouer un rôle dans la pathogénèse de l'infection, mutants qui pourront être testés dans des modèles animaux. L'invention concerne également la détec- tion du polymorphisme des gènes codant pour l'uréase chez C.Pvlori à l'aide des sondes nucléotidiques définies ci-dessus et d'enzymes de restriction appro- priées. Les conditions dans lesquelles cette détection est réalisée sont plus particulièrement décrites dans l'article de Gusella J.F. dans J. of Clin. - investi- gations (1986), 77, 1723-1726. L'invention vise également les applica- tions immunologiques de la protéine codée, plus spé- cialement pour l'élaboration d'antisérum spécifique ainsi que d'anticorps polyclonaux et monoclonaux. Les anticorps polyclonaux sont formés selon les techniques classiques par injection de la protéine à des animaux, récupération des antisérums, puis des anticorps à partir des antisérums par exemple par chromatographie d'affinité. Les anticorps monoclonaux sont produits de manière habituelle en fusionnant des cellules myélomes avec des cellules de rate d'animaux préalablement immunisés à l'aide des protéines de l'invention. L'invention -vise, en outre, un procédé de dépistage in vitro de la présence éventuelle de C.opylori dans un échantillon biologique susceptible de le contenir. Ce procédé est caractérisé en ce qu'il comprend: - la mise en contact de l'échantillon avec un anticorps selon l'invention, dans des conditions permettant la production d'un complexe immunologique formé entre tout ou partie de la protéine à activité uréase produite par C.pDvlori et cet anticorps, et - la détection du complexe immunologique. Pour la mise en oeuvre des méthodes de dépistage in vitro, considérées cidessus basées sur l'utilisation de sondes nucléotidiques, on a recours avantageusement à des nécessaires ou kits comprenant: - une quantité déterminée d'une sonde nucléotidique selon l'invention, - avantageusement, un milieu approprié respectivement à la formation d'une réaction d'hybridation entre la séquence à détecter et la sonde, - avantageusement des réactifs permettant la détection des complexes d'hybridation formés entre la séquence de nucléotides et la sonde lors de la réaction d'hybri- dation. Pour la mise en oeuvre des méthodes de dépistage in vitro définies ci-dessus, basées sur l'utilisation d'anti-corps, on aura recours avantageu- sement à des nécessaires ou kits, comprenant: - une quantité déterminée d'un anticorps selon l'in- vention, - avantageusement un milieu approprié à la formation d'une réaction immunologique entre au moins une partie de la protéine à activité uréase produite par une souche de C.Dvlori et l'anticorps, avantageusement, des réactifs permettant la détection des complexes immunologiques formés entre au moins une des complexes immunologiques formés entre au moins une partie de la protéine à activité uréase et l'anticorps lors de la réaction immunologique. D'autres avantages et caractéristiques de l'invention sont rapportés dans la description qui suit concernant le clonage des gènes responsables de la production de la protéine à activité uréase chez C.pvlori, le séquençage de la région associée à l'expression de la protéine à activité uréase et la spécificité de sondes nucléotidiques pour la détection de C.Pvlori. Dans cette description, on se réfère aux figures 1 et 2 qui représentent: - la figure 1, la carte de restriction d'un fragment PstI-EcoRI du cosmide recombinant IID2 portant l'information requise pour l'expression de l'uréase chez C.Jejuni, et - la figure 2, la carte de restriction d'un fragment d'environ 8kb de pILL590. 1) Réalisation d'une banque génomique dans un vecteur cosmidique navette; clonage des gènes impliqués dans la production de l'uréase chez C.pvlori. L'ADN chromosomique de la souche C.pDlori (85P) est préparé de façon à générer des fragments d'ADN de haut poids moléculaire; environ 300pg de cet ADN chromosomique sont soumis à une digestion partielle controlée par l'endonucléase de restriction Sau3A et déposés sur gradient de sucrose de façon à isoler sélec- tivement des fragments de digestion compris entre 35 et 45kilobases. 1,5 ug de ces fragments sont ligaturés in vitro au vecteur navette-cosmide pILL575 linéarisé par l'endonuclése BamHI et déphosphorylé. pILL575 a été construit à partir du cosmide navette pILL550 décrit par Labigne-Roussel et al. dans J. Bacteriol. 169:5320-5323, 1987, dans lequel a été inséré le site "cos" du phage lambda (fragment Bgl II de 1,7 kb de pERG153 inséré au site Pvu II de pILL550); il est donc comme lui mobilisable par conjugaison, code pour une résistance à la kanamycine qui s'exprime à la fois chez E.coli et Campvlobacter (Kmr) et se réplique à la fois chez E. coli et chez C.ieiuni du fait de la présence de deux origines de réplication, l'une fonctionnelle chez E.coli exclusi- vement l'autre uniquement chez Campylobacter. Les pro- duits de cette ligation sont empaquetés in vitro dans les particules de lambda puis introduits par transfec- tion dans une souche de E.coli hébergeant un plasmide IncP capable de complémenter en trans les fonctions de transfert des cosmides recombinants. Les colonies de E.coli infectées et résistantes à la kanamycine sont immédiatement conservées individuellement à -80'C; une banque génomique cosmidique représentative de l'ensemble du génome de Camp lobacter Pylori est réalisée chez E.coli en conservant environ 500 clones indépendants. Chacun des cosmides recombinants est alors transféré par conjugaison d'E. coli à une souche réceptrice de Campvlobacter jejuni C31, naturellement urease. On vérifie pour chacun de ces transconju- gants résistants à la kanamycine, s'il y a synthèse par Campyvlobacter jeiuni d'une uréase. On isole un cosmide sur 106 analysés portant une information génétique conférant à Campvlobacteur ieiuni C31 la capacité de produire une uréase. Le cosmide recombinant (IID2) a une taille de 54 kilobases. La position relative des sites de clivage par les endonucléases de restriction PstI, BamHI, SmaI et EcoRI sur cette séquence est présentée sur la figure 1. 2) Identification du ou des gènes requis pour la production d'uréase chez CamDvlobacter pylori. On effectue le sous-clonage des gènes uréases en réalisant à partir de l'ADN cosmidique IID2 préparé chez E.coli des digestions partielles par l'endonucléase Sau3A de façon à générer des fragments de digestions partielles allant de 8 à 15 kilobases. On recherche le plus petit plasmide hybride cloné chez E.coli conférant l'aptitude à produire une uréase après son transfert par conjugaison à Campvlobacter récepteur. 4 plasmides sur 37 testés portent l'infor- mation nécessaire à l'expression de l'uréase chez Campvlobacter ieiuni: pILL586, pILL587, pILL589 et pILL590. Par comparaison des cartes de restriction de ces quatre hybrides, on constate la présence d'une séquence de nucléotides de 4,2 kilobases commune aux quatre hybrides, suggérant qu'il s'agit là de la région requise pour l'expression de l'uréase. Un certain nombre de délétions ont été réalisées qui confirme ces conclusions. Le fragment EcoRI-Pst I de pILL590 a été utilisé comme sonde dans des hybridations avec l'ADN total de C.r lori 85P en vue de s'assurer que les différents fragments de restrictions générés avec BamHI et HindIII à partir de pILL590 étaient présents dans P. Les résultats obtenus montrent que la séquence de 8 kb présente dans pILL590 n'a pas subi de réarrangements au cours des différentes étapes de clonage. 3) Séquence de nucléotides de la région associée à l'expression de l'uréase. La séquence du fragment HindIII compris entre les sites H3 et H4 correspond à la séquence des 294 nucléotides de l'enchaînement (I). La séquence suivante de 610 nucléotides de l'enchaînement (II) est interne au fragment défini par les sites H4 et B1 (Figure 2). 4) Spécificité des sondes nucléotidiques pour la détection de Campvlobacter pv1ori. Le fragment EcoRI-PstI de 8 kb provenant de pILL590 a été utilisé comme sonde radioactive dans des expériences d'hybridation. 32 Campnvlobacter pylori ont été testés en hybridation sur colonies et ont donné un signal positif; sur 35 Camp lobacter jejuni, fétus et coli étudiés aucune n'a donné de signal positif dans des conditions d'hybridation stringentes classiques (50% de formamide, 37, 3XSSC). Dans ces mêmes conditions, la sonde C.p lori de 8 kilobases n'a pas donné de signal positif avec la liste des microorganismes suivants qui sont tous naturellement des producteurs d'uréase: Klebsiella oxvtoca (3 souches), Klebsiella Dneumoniae (3 souches), Proteus mirabilis (3 souches) Proteus morganii (3 souches) Proteus rettqeri (3 souches) Proteus vulqaris (2 souches) Providencia stuartii (3 souches), Pseudomonas picketti (3 souches), Yersinia enterocolitica (3 souches), 5 souches d'Acinetobacter uréase +, 2 souches d'Escherichia coli uréase + et 3 souches de Cotrobacter freundii uréase + L'absence de faux positif avec le fragment 8 kb garantit la spécificité des sondes nucléotidiques proposées. REVENDICATIONS 1. Séquence de nucléotides, caractérisée en ce qu'elle comprend au moins une partie d'une séquence codant pour une protéine & activité uréase telle qu'exprimée par C. pylori. 2. Séquence de nucléotides capable de s'hybrider avec des gènes codant pour une protéine à activité uréase telle qu'exprimée chez C. pilori dans les conditions suivantes:68C, 6 x SSC dans un milieu de Denhardt. 3. Séquence de nucléotides, caractérisée en ce qu'elle porte l'information requise pour la production d'une protéine à activité uréase ou de fragments de cette dernière capables de former un complexe immunologique avec des anticorps respectivement contre la protéine & activité uréase telle qu'exprimée par C. vylori, ou contre des fragments de cette dernière. 4. Séquence de nucléotides selon l'une quelconque des revendications l & 3, caractérisée en ce qu'elle comprend un fragment EcoRI(ClaI, BamHI)-PstI(HindIII) d'environ 8 kb dont la carte de restriction enzymatique est représentée sur la figure 2. 5. Séquence de nucléotides selon la revendication 4, caractérisée en ce qu'elle comprend au moins une partie d'un fragment d'environ 4,2 kb ( 5 %) délimité par les nucléotides d'extrémité situés respectivement à une distance d'environ 0,55 kb en amont du site H2 représenté sur la figure 1, et d'environ 0,7 kb en aval du site Bl représenté sur la figure 2. 6. Séquence de nucléotides recombinante, caractérisée en ce qu'elle comprend une séquence selon l'une quelconque des revendications 1 & 5, le cas échéant, associée avec un promoteur capable de contrôler la transcription de la séquence et une séquence d'ADN codant pour des signaux de terminaison de la transcription. 7. Séquence de nucleotides, caractérisée en ce qu'elle est capable de sthybrider avec une sonde nucléotidique formée & partir de la séquence présentant: 7 / / / -1'enchatnement (I) de nucleotides suivant: ' ' .ds - --- 110 3' - ou l'enchatnement (II) de nucléotides suivant: zoo ' -7 to 3' - ou les enchatnements de nucléotides complémentaires respectivement des enchatnements (I} et (II).sus-ràentionc.es. 8. Séquence de nucleotides, caractérisée en ce qu'elle comprend un enchaînement de nucléotides selon la revendication 7 ou qu'elle est constituée par au moins une partie de cet enchaînement. 9. Séquence de nucléotides correspondant, selon le code génétique universel, & la séquence (III) en acides aminés suivante: A2]!.y,GC.uCIn.. q--'_14!.eeI!u Ser. A.pTLt'-?ysh-'lyAlySlmValCjailaXaGnV,4tc ia-, Vl-Xaas / 10. Séquence de nucléotides correspondant, selon le code génétique universel, & la séquence (IV) en acides aminés suivante: 11. Vecteur recombinant, notamment plasmide ou cosmide recombinant, capable de transformer une cellule hôte appropriée, ledit vecteur contenant une séquence de nucléotides selon l'une quelconque des revendications 1 & 10 sous le contrôle d'éléments de régulation permettant l'expression de ce fragment dans la cellule hôte. 12. Plasmide pILL590 porté par la souche E.coli S17-1 déposée le 16 août 1988 sous le numéro I795 & la C.N.C.M. 13. Souche de micro-organisme transformée à l'aide d'au moins un vecteur selon la revendication 11 ou 12 ou d'une séquence de nucleotides selon l'une quelconque des revendications 1 à 10 14.Protéine à activité uréase du type de celle exprimée chez C. pylori et ses fragments peptidiques, correspondant, selon le code génétique universel, aux séquences de nucléotides selon l'une quelconque des revendications 1 à 10. 15. Protéine & activité uréase du type de celle exprimée chez C. pylori, telle qu'obtenue par transformation de cellules hôtes au moyen d'un vecteur recombinant selon la revendication 11 ou 12, mise en culture, dans un milieu approprié, des cellules hôtes transformées et récupération de l'uréase & partir de ces cellules ou directement à partir du milieu de culture. 16. Anticorps polyclonal ou monoclonal, caractérisé en ce qu'il est dirigé contre toute ou partie de la protéine, ou de ses fragments, selon la revendication 14 ou 15. 17. Sonde de détection caractérisée en ce qu'elle comprend tout ou partie des séquences de nucléotides selon l'une quelconque des revendications 1 à 10. 18. Procédé de dépistage in vitro de la présence éventuelle de C. pylori dans un échantillon susceptible de le contenir, caractérisé en ce qu'il comprend les étapes suivantes: - éventuellement l'amplification préalable de la quantité de séquences de nucleotides selon l'une quelconque des revendications 1 à 10, susceptibles d'être contenues dans l'échantillon, à l'aide d'amorces susceptibles respectivement de se lier, d'une part à l'extrémité 5' d'un brin de ladite séquence de nucléotides et d'autre part, & l'extrémité 3' de l'autre brin de ladite séquence de nucléotides, - la mise en contact de l'échantillon biologique sus- mentionné avec une sonde nucléotidique selon la revendication 17, dans des conditions permettant la production d'un complexe d'hybridation formé entre ladite sonde et ladite séquence de nucléotides, - la détection du susdit complexe d'hybridation. 19. Procédé de dépistage in vitro de la présence éventuelle de C. Dpylori dans un échantillon biologique susceptible de le contenir, caractérisé en ce qu'il comprend: - la mise en contact de l'échantillon avec un anticorps selon la revendication 16, dans des conditions permettant la production d'un complexe immunologique formé entre tout ou partie de la protéine à activité uréase produite par C. pylori et cet anticorps, et - la détection du complexe immunologique. 20. Nécessaire ou kit pour la mise en oeuvre d'une méthode de dépistage in vitro de la présence éventuelle de C. pylori dans un échantillon, caractérisé en ce qu'il comprend: - une quantité déterminée d'une sonde nucléotidique selon la revendication 17, - avantageusement un milieu approprié & la formation d'une réaction d'hybridation entre la séquence à détecter, et la sonde sus-mentionnée, - avantageusement des réactifs permettant la détection des complexes d'hybridation formés entre la séquence de nucléotides et la sonde lors de la réaction s d'hybridation. 21. Nécessaire ou kit pour la mise en oeuvre d'une méthode de dépistage in vitro de la présence éventuelle de C. DPylori dans un échantillon, caractérisé en ce qu'il comprend: - une quantité déterminée d'un anticorps selon la revendication 16, - avantageusement un milieu approprié à la formation d'une réaction immunologique entre au moins une partie d'une protéine à activité uréase produite par une souche de C. Dylori et l'anticorps, - avantageusement, des réactifs permettant la détection des complexes immunologiques formés entre au moins une partie de la protéine uréase et 1'anticorps lors de la réaction immunologique. 22. Utilisation en tant qu'amorces dans des techniques d'amplification d'ADN, de type PCR, de deux séquences de nucléotides d'environ au moins 20 nucléotides, compris dans l'une des séquences selon l'une quelconque des revendications 1 à 10, et distantes de 200 à 250 nucléotides environ, l'une des séquences étant capable de se lier l'extrémité 5 séquences étant capable de se lier & l'extrémité 5' d'un brin de la séquence à amplifier et la deuxième séquence à l'extrémité 3' de l'autre brin.