Brevet FR2623506A1 — publié le 19890526

PROCEDE DE PREPARATION DE SYNTHONS PEPTIDIQUES La présente invention concerne un procédé de préparation de synthons peptidiques. Elle concerne plus particulièrement une nouvelle méthode de synthèse peptidique non racémisante. Il est connu d'après certains ouvrages spécialisés tels que par exemple (The Peptides, Vol. 1, Academic Press, 1979 ou Principles of peptides synthesis, Springer, 1984) de réaliser des synthèses pepti- diques par condensation d'une chaîne peptidique dont la terminaison acide est activée (E) et la terminaison amine est protégée (P) avec une autre chaîne peptidique dont seule la terminaison acide est estérifiée en présence d'une base organique qui permet de neutraliser le groupe partant EOH qui est dans la majorité des cas acide selon les réactions suivantes activation base P-NH-CH - COOR + ECl > P-NH-CH-C-OE + ClR I O couplage base P-NH-LH- ZOE + H2N-bH-COOR -> P-NH-CH-Q-NH-CH-COOR + EOH La base utilisée quelle qu'elle soit provoque une racémisation importante du motif peptidique soit au cours de l'étape d'activation soit au cours de l'étape de couplage. Or, il est bien connu en synthèse peptidique que la plupart des peptides ne sont actifs que sous une seule forme diastéréoisomère. La racémisation provoque donc une perte d'activité des produits obtenus après la condensation, ce qui est très nuisible car les matières premières utilisées chiralement actives sont d'un prix souvent très élevé. Les peptides étant utilisés dans l'industrie pharmaceutique qui exige des normes analytiques sévères doivent être purifiés s'ils sont obtenus sous forme de mélange de diastéréoisomères lors de leur synthèse. Cette purification est très onéreuse. L'industrie est donc à la recherche depuis longtemps le procédés chimiques concurrentiels des procédés d'extraction à partir de produits naturels qui permettent d'atteindre des peptides actifs d'une pureté chirale bien définie et à un coût pouvant concurrencer les procédés d'extraction. Il est connu par exemple de préparer les peptides en inhibant au maximum la racémisation par l'utilisation d'agents activants tels que le dicyclohexylcarbodiimide (DCC) et d'additifs tels que: le Nhydroxysuccinimide, l'hydroxy-1 benzotriazole, le N-hydroxy norbornène-5 dicarboximide-2,3. Il est généralement connu de condenser sans trop de racémisation des aminoacides N-protégés par des groupes uréthannes par une technique de synthèse permettant d'additionner à un peptide les acides aminés un par un. Par contre, lorsque la fonction amine est substituée par un groupe acyle (Miyazawa, Yamada et Kuwata, Peptide Chemistry, 1982, 69) ou fait partie d'une chaine peptidique, le taux de racémisation n'est plus négligeable et peut atteindre %. Le taux de racémisation varie ainsi avec l'acide aminé, le groupe protecteur, le réactif activant, les conditions de la réaction d'activation et en particulier peut être total lorsque l'on utilise un groupe protecteur du type acyle. La présente invention permet de résoudre les problèmes laissés dans l'art antérieur. Elle permet par une voie chimique & partir de matières premières peu onéreuses d'accéder A des synthons peptidiques présentant une pureté chirale égale ou supérieure à 99 % lors du couplage par exemple de la valine sur une autre valine, qui avec d'autres conditions expérimentales (activation du type: DCC et additif ou chlorure de pivaloyle et amine tertiaire ou BOP Cl et amine tertiaire) conduit & une racémisation non négligeable. Elle a pour objet un procédé de préparation de synthons peptidiques optiquement actifs caractérisé en ce que: - dans une première étape on prépare un dérivé O-silylé (I) d'un peptide ou d'un aminoacide dont la fonction azotée est protégée, - dans une deuxième étape on active le peptide ou l'aminoacide O-silylé par un sel complexe de chloroimmonium ou de dichlorophosphénium, - dans une troisième étape on condense le peptide ou l'aminoacide activé (III) sur un peptide ou un aminoacide dont la fonction amine a été N-sylilée. La présente invention exclut donc toute intervention de composés basiques particulièrement dans l'étape d'activation (B) et dans l'étape de couplage (C). Elle est particulièrement intéressante lorsque l'on part d'un peptide 0-silylé contenant plus d'un aminoacide. Il est aussi connu d'après le brevet européen n 184243 de préparer des dérivés silylés d'acides aminés ou de peptide à l'aide de trialkylcyanosilanes puis & coupler ces dérivés silylés avec des aminoacides ou des peptides activés. Lors de la silylation il y a libération d'acide cyanhydrique dont la toxicité est telle qu'elle a fait exclure ce procédé de tous les programmes de l'industrie. D'autre part les agents d'activation utilisés dans ce brevet ne sont pas utilisables sur des fragments peptidiques sans apparition d'une racémisation importante. L'ensemble de la réaction de la présente invention peut étre schématisé par les équations suivantes: 1 R (A) Q N - C*-Coo - OH + ASiR 4RR6!*- -C OOsiR4R R (I) +1 AH R3 3(I) (III) +4 5 64R *R R5R6six R1 R2 R7 R8 (C) Q N - C*-CO OZ + R4R5R6Si N C*CO OR10 R3 9 R9 |R1 R2 | R 8 Q N-C*-CO 7 _ R 8o 4 Co N,_C*-CO OR 10 + R4R5R 6SiOZ R3 i R9 dans lesquelles R' / A représente le chlore ou un groupe - N dans lequel Rit * R' représente l'hydrogène, un groupe alkyle CnH2n + 1 avec n compris entre 1 et 4, * R'' représente un groupe alkyle CnH2n + 1 avec n compris entre 1 et 4 ou un groupe trialkylsilyl dans lequel le groupe alkyl contient 1 à 4 atomes de carbone, *R' et R" peuvent aussi former un groupe alkylsilyloxyalkylidène et notamment le groupe OSiMe 1 3 (R)3C-C=N-SiMe3 - R représentant un hydrogène ou un fluor. Q est un des groupes protecteurs de la fonction amine N-terminale utilisés dans les méthodes connues dans l'art antérieur (Gross et Meienhofer, The peptides, Vol. 3, Academic Press, 1981). A titre d'exemples non limitatifs, Q peut être le groupe t-butyloxycar- bonyle (Boc), benzyloxycarbonyle (Z), fluorénylméthyloxycarbonyle (Fmoc), benzoyle, trifluoroacétyle, formyle; R1 et R7 sont soit un hydrogène, soit un groupe méthyle R2 et R8 peuvent être choisis parmi les substituants suivants l'hydrogène, les groupes alkényles ou alkyles CnH2n+ 1 linéaires ou ramifiés, n possédant des valeurs entières comprises entre 1 et 4, un groupe benzyle ou l'un des groupes dont la liste non limitative figure ci-après 2623506 Q1 CH2-, Q2OCH2- Q20-CH- Q3SCH2-, CH3S-CH2-CH2-, Q8HN-CO-CH2-, Q8HN-CO-CH2-CH2-, R1002C-CH2- R1002C-CH2-CH2 - CH 2 N-Q4 NH(CH2) 4- QNH-(CH2)3-' CH2- ' N t N-Q N6 Q7 Q4 dans lesquels Q1' Q2' Q3' Q4' Q5' Q6' Q7 et Q8 sont des groupes protecteurs des chaînes latérales utilisés dans les méthodes connues dans l'art antérieur (Gross et Meienhofer, The peptides, Vol. 3, Academic Press, 1981). A titre d'exemples non limitatifs, Q1 peut étre le groupe benzyle, bromo-2 benzyle ou dichloro-2,6 benzyle, Q2 le groupe benzyle ou t-butyle, Q3 le groupe benzyle, t-butyle, trityle, acétamidométhyle ou benzamidométhyle, Q4 le groupe trifluoroacétyle, t-butyloxycarbonyle ou benzyloxycarbonyle, Q5 peut étre le groupe nitro, p-méthoxybenzènesulfonyle ou mésitylènesulfonyle lorsque Q6 = H, ou bien Q5 et Q6 peuvent être simultanément constitués par le groupe adamantyloxycarbonyle, Q7 peut être le groupe phénacyle, benzyloxyméthyle ou t-butoxyméthyle, Q8 peut être enfin le groupe benzhydryle, dimethoxybenzydryle ou xanthydryle. R3 et R9 sont choisis parmi les substituants: hydrogène, ou un groupe alkyle CnH2n+l avec n compris entre 1 et 4. R1 avec R2 ou R7 avec R8 peuvent aussi former une chaine cyclopolyméthylénique contenant 2 & 5 atomes de carbone, les atomes de carbone sur lesquels sont fixés les substitutions R2 et R8 possèdent la configuration L ou D, ils sont asymétriques (*) sauf si R2 = R3 ou R8 = R9 À x et y sont des nombres entiers compris entre 1 et 15 R4, R5 et R6 sont choisis parmi l'hydrogène, les groupes alkyles CnH2 n+l, avec n compris entre 1 et 4, à condition que ces trois termes ne soient pas simultanément des hydrogènes, R10 est un des groupes protecteurs de la fonction acide C-terminale et des fonctions acides des chaînes latérales utilisés dans les méthodes connues dans l'art antérieur (Gross et Meienhofer, The peptides, Vol. 3, Academic Press, 1981). A titre d'exemples non limitatifs, on peut citer les groupes méthyle, éthyle, phényle benzyle ou t-butyle. XZ représente le réactif d'activation. Le réactif d'activation XZ est choisi parmi les sels complexes de chloroimmonium et les sels complexes de dichlorophosphénium. Les sels complexes de chloroimmonium répondent & la formule générale (IV) : R R" NC RMCl-1 (IV) R cl dans laquelle: * R et R', identiques ou différents, représentent un radical alkyle ayant de préférence de 1 & 5 atomes de carbone, ou encore un radical divalent de formule -(CH)n-(X)n,- (CH2)n dans laquelle: X est un groupe méthylène ou un hétéroatome tel que l'atome d'oxygène ou d'azote, n est un nombre entier de 2 à 6, de préférence égal à 2, n' est un nombre entier égal & O ou 1, * R" est un atome d'hydrogène ou un groupement alkyle, alkényle, aryle ou aralkyle. * M représente un atome d'aluminium et n = 3 ou un atome d'antimoine et n = 5. Les sels complexes de dichlorophosphénium répondent à la formule générale (V) PCl Mcl (V) PC2 n+1(V dans laquelle M représente l'antimoine et n = 5. Le procédé de préparation des complexes de formule (IV) est réalisé par addition à un sel de chloroimmonium du chlorure d'aluminium ou d'antimoine V et pour les complexes de formule (V) par addition au trichlorure de phosphore du chlorure d'antimoine V. La réaction de silylation de la fonction acide est de préférence réalisée & partir d'un aminoacide ou d'un peptide N-protégé, par réaction avec un réactif silylant de formule ASiR4R R6 dans laquelle les termes A,R4,R5 et R6 ont la même signification que précédemment. La réaction de silylation de la fonction amine est de préférence réalisée A partir d'un aminoacide ou d'un peptide par réaction entre un ester correspondant et un réactif silylant de formule ASiR4R5R6 dans laquelle les termes A, R4, R5 et R6 ont la même signification que précédemment. Ces réactions de silylation sont effectuées dans les conditions connues dans l'art antérieur. Les dérivés de l'aminoacide ou du peptide sont introduits avec l'agent silylant dans un solvant tel que par exemple un éther (tétrahydrofuranne), un solvant aliphatique halogéné, un ester, un nitrile (acétonitrile) ou un amide (DMF). Selon une méthode de mise en oeuvre on utilise notamment des concentrations en aminoacide ou peptide dans le solvant comprise entre 0,1 et 1 mole par litre. On utilise avantageusement des concentrations en agent silylant par rapport à l'aminoacide ou au peptide comprises entre 1 et 3 moles. Pour une meilleure mise en oeuvre de l'invention il est préfé- rable au cours de la deuxième étape ou étape d'activation qui consiste à mettre en contact un peptide ou un amino-acide dont la fonction amine est protégée et la fonction acide est O-silylée avec un sel complexe de chloroimmonium ou de dichlorophosphénium, d'opérer sous un courant de gaz inerte tel que l'azote ou l'argon, dans un solvant aliphatique ou aromatique halogéné. On peut utiliser tout solvant permettant de solubiliser le peptide ou l'aminoacide activé et ne réagissant ni avec lui ni avec l'immonium ni avec le phosphénium. Le solvant est choisi notamment parmi le chlorure de méthylène, le chloroforme, le dichloro-1,2 éthane, le chlorobenzène. On préfère utiliser une quantité de sel complexe telle que le rapport molaire du sel complexe de chloroimmonium ou du sel complexe de dichlorophosphénium aux peptides ou à l'aminoacide soit compris entre 1,1 et 1,3. La réaction entre le sel complexe de chloroimmonium ou de dichlorophosphénium et l'aminoacide ou le peptide est réalisée de préférence & une température comprise entre - 20 et 30 C. On utilise de préférence une concentration molaire en sel complexe, en aminoacide ou en peptide dans le solvant compris entre 0,01 et 0,1 mole/litre. La durée de l'étape d'activation lorsqu'elle a lieu avec un sel complexe de chloroimmonium varie avantageusement entre 30 minutes et 2 heures. En ce qui concerne la réaction de couplage (C) il est connu dans l'art antérieur de coupler des dérivés silylés sur la fonction carboxyle et sur la fonctiQn aminée mais dans aucun de ces procédés n'est décrit le couplage entre un dérivé activé par un groupe immonium ou phosphénium et un dérivé silylé sur la fonction azotée. Or ce couplage bien précis apporte des résultats quant & l'absence de racémisation tout à fait inattendus. La réaction de couplage ou troisième étape du procédé de l'invention est réalisée par addition de préférence du composé aminé sylilé à la solution du peptide ou de l'aminoacide activé sous atmosphère de gaz inerte et de préférence & une température comprise entre - 10 et 30 C. On utilise avantageusement un additif choisi parmi les phosphites d'alkyle. On préfère utiliser le phosphite de méthyle. On ajoute avantageusement une quantité de phosphite telle que le rapport molaire par rapport a l'aminoacide activé ou au peptide activé soit compris entre 2 et 3. Avantageusement avec les sels de dichlorophosphénium on peut procéder simultanément à l'étape d'activation et de couplage. La durée de l'étape de couplage varie préférentiellement entre et 24 heures. L'invention sera plus complètement décrite & l'aide des exemples suivants qui ne doivent en aucun cas être considérés comme limitatifs de l'invention. Exemple 1 Dans un ballon tricol muni d'un thermomètre, d'un agitateur et d'une ampoule & brome et maintenu sous azote, on place une solution de 1 ml (10 meq) de trichlorure de phosphore dans 8 ml de chloroforme. On refroidit à - 200C et ajoute goutte & goutte avec agitation 2 ml (13 meq) de pentachlorure d'antimoine dans 8 ml de chloroforme. L'addition terminée, on agite encore 10 min à - 20 C, puis laisse revenir à la température ambiante durant 1 h. On refroidit à - 20 C, le précipité est filtré, et lavé 3 fois avec de petites quantités de chloroforme froid. On sèche finalement sous vide sans chauffer. L'hexachloroantimoniate de dichlorophosphénium fond à 105-107 (Rendement 90 %) Exemple 2 0,557 g (2,5 meq) de l'ester benzylique de l'acide N-t-butyloxycarbonyl Laspartique et un excès d'hexaméthyldisilazane dans 20 ml de chlorure de méthylène anhydre sont agités sous azote 2 h à la température ambiante. On concentre sous vide sans chauffer et reprend le résidu par 50 ml de CH2Cl2. On ajoute alors 0,63 g (2,5 meq) d'ester méthylique de la Ntriméthylsilyl L-phénylalanine, 1 ml (7,5 meq) de phosphite de méthyle, 1,31 g (3 meq) d'hexachlo- antimoniate de dichlorophosphénium et agite 12 h à la température ambiante sous azote. On filtre, lave trois fois avec de l'acide citrique N. trois fois avec une solution saturée de bicarbonate de sodium, une fois & l'eau, sèche sur sulfate de magnésium et chasse le solvant sous vide. Le rendement en Boc-Asp (OBzl)-Phe-OCH3 est de 55 %. La déprotection en Aspartame est finalement réalisée selon les méthodes de l'art. On réduit catalytiquement pour éliminer le reste benzyle de l'acide aspartique et on traite par l'acide trifluoracétique pour éliminer le groupe Boc. Exemple 3 0,732 g (2,5 meq) d'ester triméthylsilylique de la benzoyl-L-valine, 0,51 g (2,5 meq) d'ester méthylique de la N-triméthylsilyl L-valine et 1 ml (7, 5 meq) de phosphite de méthyle sont dissous dans 50 ml de chlorure de méthylène. On ajoute sous azote 1,31 g (3 meq) d'hexachloroantimoniate de dichlorophosphénium et laisse agiter 12 h à la température ambiante. On filtre et traite le filtrat comme indiqué dans l'Exemple 2. Le dipeptide Bz-Val-Gly-OCH3 qui sert de test pour la déter- mination du rendement en chromatographie liquide haute performance est introduit avant les lavages. Le rendement en Bz-Val-Val-OCH3 et le taux de racémisation (exprimé en DL %) sont déterminés à partir du résidu brut par chromatographie liquide haute performance en phase inverse, sur colonne C 18 Ultrashere Altex, avec comme éluant un mélange CH30H 52% - H20 48 % et un débit de l ml/min (détection à 254 nm). Rendement 65 % DL % = O %. Exemple 4 on opère comme dans l'Exemple 3, mais en utilisant l'ester méthylique de la N-triméthylsilyl L-proline comme composant aminé. Le rendement en Bz-Val-Pro-OCH3 et le taux de racémisation sont déterminés par chromatographie liquide haute performance en phase inverse, sur colonne C 18 Ultrasphere Altex, avec comme éluant un mélange CH30H 48 % - H20 52 % et un débit de 1 ml/min. Rendement 55 % DL % = 1 %. Exemple 5 Préparation de l'hexachloroantimoniate de diméthylchloroimmonium (IV) (Arnold et Holy, Coll. Czech. Chem. Comm., 1962, 27, 2886). Une solution de 2,97 g de pentachlorure d'antimoine dans 10 ml de chloroforme est ajoutée goutte à goutte avec agitation à - 40 C & ml d'une solution 2 M de chlorure de diméthylchloroimmonium dans le chloroforme. Le précipité est filtré, lavé 2 fois avec du chloroforme et séché. F. 162-164 C (Rendement 90 %). Exemple 6 1,28 g (3 meq) d'hexachloroantimoniate de diméthylchloroimmonium (IV) (R = R' = CH3, R" = H, M = Sb, n = 5) sont mis en suspension sous azote dans 50 mi de chlorure de méthylène refroidi & - 20 C. On ajoute goutte & goutte avec agitation 0,732 g (2,5 meq) d'ester triméthylsilylique de la benzoyl-L-valine dissous dans 5 ml de CH2Cl2. Après dissolution du réactif, on agite encore 30 min & 2 2' - 20 C. On ajoute alors 0,93 g (7, 5 meq) de phosphite de méthyle; après 15 min d'agitation à - 20 C, on introduit toujours sous azote 0,51 g (2,5 meq) d'ester méthylique de la N-triméthylsilyl-L-valine. Le mélange réactionnel est agité 1 h à - 20 C, puis on Iaisse len- tement revenir à la température ambiante et agite 12 h à 20 C. On filtre, lave le filtrat 3 fois avec de l'acide citrique N, 2 fois avec une solution saturée de bicarbonate de sodium et une fois à l'eau. On sèche sur sulfate de magnésium et chasse le solvant sous vide. Rendement 50 % DL % 0,2. Exemple 7 On opère comme dans l'exemple 6, mais en l'absence de phosphite de méthyle. Le rendement est d'environ 20 %. REVENDICATIONS 1 - Procédé de préparation de synthons peptidiques optiquement purs caractérisé en ce que dans une première étape on prépare un dérivé Osilylé d'un peptide d'un aminoacide dont la fonction azotée est protégée, dans une deuxième étape on active le peptide ou l'aminoacide O-silylé par un sel complexe de chloroimmoniua ou un sel complexe de dichlorophosphénium, dans une troisième étape on condense le peptide ou l'aminoacide activé sur un peptide ou un aminoacide dont la fonction amine a été N-sylilée. 2 - Procédé selon la revendication 1 caractérisé en ce que le peptide de la première étape contient plus de 2 aminoacides. 3 - Procédé selon la revendication 1 caractérisé en ce que on opère au cours des trois étapes en l'absence de dérivés basiques. 4 - Procédé selon la revendication 1 caractérisé en ce que le sel complexe de chloroimmonium répond à la formule (IV): R R" "-.+ c/MO N =C (IV) 7C n+1 R' Cl dans laquelle: * R et R', identiques ou différents, représentent un radical alkyle ayant de préférence de 1 à 5 atomes de carbone, ou encore un radical divalent de formule -(CH2)n-(X)n- (CH2)n dans laquelle: X est un groupe méthylène ou un hétéroatome tel que l'atome d'oxygène ou d'azote, À n est un nombre entier de 2 à 6, de préférence égal à 2, n' est un nombre entier égal à 0 ou 1, *R" est un atome d'hydrogène ou un groupement alkyle, alkényle, aryle ou aralkyle. M représente un atome d'aluminium et n = 3 ou un atome d'antimoine et n = 5. - Procédé selon la revendication 1 caractérisé en ce que le sel complexe de dichlorophosphénium répond à la formule générale (V) PC2 Mcln+1 dans laquelle M représente un atome d'antimoine et n = 5. 6 - Procédé selon la revendication 1 caractérisé en ce que on utilise une quantité de sel complexe de chloroimmonium ou de dichlorophosphénium telle que le rapport molaire dudit sel au peptide ou à l'aminoacide est compris entre 1,1 et 1,3. 7 - Procédé selon la revendication 1 caractérisé en ce que la toutes les étapes sont réalisées sous courant de gaz inerte, dans un solvant aliphatique ou aromatique halogéné. 8 - Procédé selon la revendication 7 caractérisé en ce que le solvant est choisi parmi le chlorure de méthylène, le chloro- forme, le dichloro-1,2 éthane, le chlorobenzène. 9 - Procédé selon les revendications 1 et 6 & 8 caractérisé en ce que la deuxième étape est réalisée de préférence à une tempéra- ture comprise entre - 20 et 30 C. - Procédé selon la revendication 1 caractérisé en ce que lors de la deuxième étape on utilise une concentration molaire en aminoacide activé, en peptide activé dans le solvant comprise entre 0,01 et 0,1 mole par litre. - Procédé selon la revendication 1 caractérisé en ce que au cours de la troisième étape on ajoute avantageusement un additif choisi parmi les phosphites d'alkyle.