Brevet FR2631634A1 — publié le 19891124

La présente invention concerne des vecteurs de clonage et d'expression de protéines dans les Actinomycètes ainsi que les souches transformées par ces vecteurs. Les bactéries appartenant à-l'ordre des Actinomycétales, et en particulier celles du genre Streptomyces, occupent une place particulière- ment importante en microbiologie industrielle. En effet, depuis la découverte par Waksman d'une souche de Streptomyces produisant la streptomycine, de nombreuses autres souches de Streptomyces productrices d'antibiotiques ont été isolées et exploitées industriellement pendant les quarante dernières années. La richesse et la diversité des métabolites secondaires produits par les Streptomyces sont illustrées par le fait que ceux-ci synthétisent 55 % des 4 973 antibiotiques naturels recensés en 1978. Environ 70 % des antibiotiques produits industriellement le sont par les Streptomyces. Les rnmétabolites secondaires d'origine microbienne ont surtout été utilisés pour leur activité antibactérienne, antifongique ou antitumorale. Des substances possédant 'ces types d'activité ont été découvertes en très grand nombre pendant la période 1950-1970. Actuellement, le rythme des découvertes pour ces types d'application ralentit mais toute la richesse des métabolites secondaires microbiens est loin d'avoir été exploitée. En effet, de nouveaux domaines d'application sont actuellement explorés, ils concernent les activités antiparasitaires, insecticides, herbicides ou pharmacologiques de ces produits. Dans ces domaines également les produits de Streptomyces sont nombreux: on peut citer la monensine qui domaine le marché des produits contre la coccidiose, les avermectines très actives contre les nématodes parasites du bétail et possédant également une activité insecticide, les nikkomycines bloquant la synthèse de chitine et possédant donc une activité insecticide. Les Streptomyces produisent également des substances intéressantes pour leur activité pharmacologique telles que les anti-inflammatoires et les vasodilatateurs. Une autre raison de s'intéresser aux Streptomyces est leur utilisation comme hôte pour l'expression de gènes hétérologues. En effet, de nombreux industriels possèdent le savoir-faire et les équipements nécessaires pour cultiver les Streptomyces et exploiter ces cultures. Une culture en phase stationnaire peut rester métaboliquement active pendant plusieurs semaines et continuer à synthétiser des protéines et des métabolites secondaires. Etant donné que les Streptomyces produisent un grand nombre d'enzymes extracellulaires, dont plusieurs sont utilisées industriellement telles que les protéases ou la glucose-isomérase, leur système d'excrétion pourrait être utilisé pour la production de protéines hétérologues. Streptomyces lividans a d'ores et déjà été employé avec succès comme hôte pour l'expression de l'hormone de croissance bovine par la société Biogen (Gray et coll., 1985). L'utilisation de la souche Streptomyces ambofaciens est particulièrement prisée pour la production de spiramycine, antibiotique de la famille des macrolides produit par Rhône-Poulenc. De plus, il s'agit d'une souche qui semble ne pas présenter de phénomène de restriction vis-à-vis de Pl'ADN étranger (Cox et coll., 1984), ce qui facilite les expériences de clonage moléculaire. Les principales équipes travaillant sur les Streptomyces producteurs de macrolides et utilisant donc S. ambofaciens sont celle du Pr. Omura au Japon, celle de R.H. Baltz de la société Eli Lilly aux Etats Unis et celle du Dr. A. Sabatier de la société Rhône Poulenc Santé. L'équipe de S. Omura s'intéresse principalement aux voies de biosynthèse des macrolides, à la découverte de nouveaux macrolides et à l'obtention de macrolides hybrides (Omura, 1984). L'équipe de Baltz travaille surtout avec S. fradiae et S. erythraeus produisant respectivement la tylosine et l'érythromycine (Baltz et coll., 1983), mais utilise S. ambofaciens comme hôte dans de nombreuses expériences de clonage moléculaire (Kuhstoss et Rao, 1983; Matsuhima et Baltz, 1985). C'est suite à l'étude de plusieurs souches de Streptomyces ambofaciens appartenant à deux isolats d'origine géographique différente que la présence d'un plasmide particulier a été détecté: le plasmide pSAM2 (Mol. Gen. Genet. (1984) 198:35-41, "Plasmids in different strains of Streptomyces ambofaciens: free and integrated form of plasmid pSAM2"; et Gene, 59 (1987) 137-144 "Excision and integration of a self-transmissible replicon of Streptomyces ambofaciens"). 263 1634 Le plasmide pSAM2 a une taille de 1l 1 kb, peut exister à l'état libre et/ou intégré et s'est révélé capable de se transférer d'une souche à l'autre. Le phénomène d'intégration du plasmide pSAM2 dans le chromosome des souches réceptrices a aussi pu être mis en évidence mais ce phénomène n'a pas été élucidé à l'heure actuelle. C'est pourquoi, la présente invention concerne un vecteur de clonage et d'expression d'une séquence d'ADN codant pour une protéine déterminée dans une souche d'Actinomycète, caractérisé en ce qu'il comporte: 10. une séquence d'attachement att, une séquence d'ADN codant pour une séquence int fonctionnelle dans ladite souche, et une séquence d'ADN codant pour ladite protéine spécifique et pour les éléments assurant l'expression de ladite séquence dans ladite souche. Ce vecteur est plus particulièrement destiné à être un vecteur d'expression codant pour une protéine présentant un intérêt par elle-même ou bien favorisant l'obtention de métabolites secondaires tels que ceux décrits précédemment, en particulier les antibactériens, les antifongiques, les antitumoraux, et des protéines telles que les enzymes, qui sont déjà obtenus à partir de souche- d'Actinomycètes ou qui peuvent être produits par d'autres organismes. Parmi les séquences att, il faut citer plus particulièrement les séquences choisies parmi la séquence TTCTCTGTCGGGGTGGCGGGATTTGAACCCACGACCTCTTCGTCCCGAA, la séquence présentant au moins 50 % d'homologie avec cette séquence. En effet, l'invention a mis en évidence que le mécanisme d'intégration chromosomique du plasmide pSAM2 implique une séquence d'attachement caractérisée par ce type. de séquence nucléotidique. La carte de restriction de pSAM2 a été déterminée et est représentée sur la figure I. La séquence d'attachement est encadrée sur la figure 3; elle débute à la position + 24 et se termine à la position - 24. Le nucléotide en position 0 correspond au centre du site d'attachement. 4 2631634 Les vecteurs selon l'invention comportent, en outre, une séquence codant pour une séquence int fonctionnelle dans ladite souche, il s'agit d'une séquence codant pour une intégrase, laquelle séquence précède en général ou est située au voisinage de la séquence d'attachement (voir la figure 2) . La séquence int joue un rôle important dans le phénomène d'intégration. La séquence nucléotidique correspondant à ce gène int a été déterminée et est représentée sur la figure 3: elle correspond à une séquence d'ADN comprise entre les positions + 1261 et + 97. Cette séquence int est la plupart du temps précédée, ou partiellement chevauchée, par le gène xis qui est le gène codant pour l'excision. La séquence de ce gène est représentée également sur la figure 3. Les vecteurs selon la présente invention présentent pour la plupart la propriété de s'intégrer dans les chromosomes avec une très grande stabilité. Afin d'obtenir un grand nombre de copies de vecteur par génome sous forme plasmidique, autoréplicable, avec en plus une copie intégrée ou non intégrée dans le chromosome, il est intéressant d'avoir recours à des vecteurs dans lesquels un fragment de 600 bp a été délété de part et d'autre du site EcoRI n* 33 de pSAM2, c'est-à-dire délété pour l'essentiel d'un fragment qui s'étend entre deux séquences répétées situées de part et d'autre du site EcoRI n 33 (voir figure 1). De plus, ces vecteurs peuvent contenir les fragments portant les gènes int et xis. Les vecteurs ainsi obtenus présentent la propriété de se multiplier en assez grand nombre. Comme tous les vecteurs de clonage ou d'expression, on insérera de préférence les éléments provenant de bactéries, en particulier de E. coli, afin de permettre la construction des vecteurs dans ces bactéries, mais lors de la mise en oeuvre dans les souches d'Actinomycètes, ces fragments correspondants aux bactéries E. coli pourront être supprimés. Les éléments utilisables dans les constructions bactériennes sont connus, il s'agit la plupart du temps d'une origine de réplication permettant de multiplier les plasmides, éventuellement d'une résistance fonctionnelle dans lesdits plasmides et, si nécessaire, d'autres éléments facilitant le montage dans E. coli. La séquence d'ADN codant pour ladite protéine spécifique et pour les éléments assurant l'expression de ladite séquence dans ladite souche peut être insérée à différents endroits dans le vecteur. Lorsque l'on souhaite préparer une souche d'Actinomycète produisant une protéine déterminée dont la séquence d'ADN est intégrée dans le chromosome, on utilisera de préférence un vecteur tel que décrit précédemment et dans lequel la séquence d'ADN en cause est intégrée à l'extérieur des séquences att et int, dans ce cas on favorisera l'intégration dans le chromosome. Lorsque, au contraire, on souhaitera que ce plasmide ne soit pas totalement intégrable dans le chromosome, la séquence d'ADN en cause pourra être insérée dans le gène int. Dans certains cas o l'on souhaitera que le plasmide vecteur ne puisse pas être transféré d'une souche à l'autre, la séquence d'ADN codant pour la protéine déterminée pourra être insérée au niveau de séquences codant pour les fonctions de transfert-onctionnelles de la souche transformée. Parmi les séquences codant pour une protéine déterminée, orn peut citer les séquences codant pour des résistances à certains types d'antibiotiques, notamment les séquences codant pour une résistance au Thiostrepton. La résistance au Thiostrepton pourra, dans certains cas, être utilisée comme gène marqueur. Dans ce cas, si l'on souhaite exprimer une autre protéine, il sera nécessaire de prévoir un autre site de clonage, ceci pourra être fait, par exemple, à l'aide d'un vecteur polyvalent en insérant dans l'un des vecteurs décrits précédemment une séquence de "polylinker". Dans ce dernier cas, le gène marqueur est, de préférence, placé après le site d'attachement dans les vecteurs de l'invention. Quant à la séquence "polylinker", elle est donc, de préférence, située en aval du gène marqueur, par rapport au site d'attachement le vecteur obtenu étant alors un vecteur intégratif. Un exemple tout particulièrement préféré est le vecteur pTS55 décrit dans l'exemple 1 ci- apres. Parmi les vecteurs intégratifs et réplicatifs obtenus dans le cadre de la présente invention, on peut modifier la position de la séquence "polylinker" de telle sorte que les vecteurs obtenus soient incapables de se transférer d'une souche à l'autre. De tels vecteurs peuvent être utiles notamment dans le cas de gènes étrangers codant pour des protéines particulièrement avantageuses pour la santé humaine ou animale. A titre d'exemple, on peut citer le vecteur pTSI2 dont la construction sera explicitée dans les exemples ci-après. I0 La séquence "polylinker" peut aussi être située en amont du gène marqueur, à savoir dans le gène int, de telle sorte que le vecteur obtenu ne puisse pas s'intégrer dans le chromosome des souches réceptrices. A titre d'exemple, on peut citer le vecteur pTSI3 dont la construction sera détaillée dans les exemples ci-après. Les vecteurs de la présente invention sont particulièrement avantageux en raison de leur stabilité et de leur intégration spécifique à large spectre d'hôte. Leur stabilité permet d'éviter de recourir à une quelconque pression de sélection pour maintenir le gène à l'état intégré. Dans le cas des vecteurs réplicatifs, on peut penser que les vecteurs également intégratifs sont les plus stables, la copie intégrée pouvant fournir en quelque sorte une matrice permettant de régénérer les formes plasmidiques libres. Les vecteurs selon l'invention peuvent, en outre, s'intégrer dans toutes les souches possédant le site d'intégration précédemment défini, à savoir un site ayant une séquence comprenant en totalité ou en partie la séquence nucléotidique de la position + 24 à - 24 décrite dans la figure 3. Ce site a été détecté par hybridation avec une sonde allant de la position + 21 à - 18 dans S. antibioticus (DSM 40868), S. bikiniensis (ATCC 11062), S. parvulus (ATCC 12434), S. glaucescens (ETH 22794), S. actuosus (ATCC 25421), S. coelicolor (A3(2)), S. ambofaciens, S. lividans TK64 (66) et S. griseofuscus (DSM 40191). Pour cette dernière souche, on s'est aperçu que le quatrième nucléotide, à savoir le nucléotide en position + 21, n'était pas une thymidine (T) mais une adénine (A). Un tel remplacement n'affecte pas la possibilité d'une intégration avec les vecteurs de la présente invention. De façon générale, au moins 50 % des nucléotides doivent demeurer inchangés pour que la possibilité d'intégration ne soit pas affectée. La présente invention concerne aussi le procédé de préparation d'une souche d'Actinomycète produisant une protéine déterminée dont la séquence d'ADN est À soit intégrée dans le chromosome, la séquence d'ADN en cause étant insérée à l'extérieur des séquences att et int; de préférence, cette séquence d'ADN est insérée dans les séquences codant pour les fonctions 1 5 de transfert; soit intégrée dans un plasmide non intégrable totalement dans le chromosome, caractérisé en ce que la séquence d'ADN en cause est intégrée dans le gène int. La présente invention s'étend aux souches d'Actinomycète, en particulier les Streptomyces, transformées par les vecteurs de la présente invention. La présente invention concerne aussi l'utilisation industrielle de ces souches transformées, et ce, notamment, pour l'obtention d'une protéine déterminée, par fermentation d'une souche transformée selon la présente invention dans un milieu de culture approprié et récupération de la protéine déterminée. De très nombreuses protéines peuvent être préparées grâce aux vecteurs de la présente invention. Ainsi, certains vecteurs seront plus particulièrement adaptés à des protéines dont on ne souhaite pas une expression forte. Il s'agit, notamment, du vecteur pTS55 qui permet-l'intégration d'un seul gène dans le chromosome. Il y a donc une copie unique du plasmide par cellule transformée. Un tel vecteur convient à l'expression de protéines enzymati- ques telles que l'amylase ou des gènes de régulation agissant sur la production de protéines ou de métabolites industriellement intéressants. D'autres vecteurs seront plutôt appropriés à l'expression de protéines étrangères dont on exige une expression importante. C'est ainsi que les vecteurs pTSI3 et pTS12, du fait de la délétion de part et d'autre du site EcoRI n 33 de pSAM2 (voir les exemples suivants), se maintiennent à un taux très élevé de copies lorsqu'ils sont introduits dans Streptomyces et notamment Streptomyces lividans TK64. Le nombre de copies est supérieur à 100 par génome. La présente invention est illustrée à l'aide des exemples et des figures suivants: la figure I représente la carte de restriction du plasmide pSAM2: les sites de restriction sont numérotés de 1 à 33, le premier site est Pvull (n I1), le dernier est EcoRI (n 33); la figure 2 représente la carte de restriction du fragment BamHI-EcoRI de pSAM2 suffisant pour l'intégration, ce fragment va du site BamHI n 27 au site EcoRI n0 33 la figure 3 représente la séquence de la région comprise entre Tthl ll n 2 et le site d'intégration att de pSAM2 dont la carte de restriction est représentée sur la figure 2, il s'agit de la séquence -nucléotidique du plasmide pSAM2, cette séquence a été déterminée à partir de 70 nucléotides après le site Tthlll n0 2 jusqu'au site d'intégration (att), le nucléotide 0 correspond au milieu de att; 25. la figure 4 schématise la construction de pTS53 la figure 5 représente la carte de restriction du vecteur pTS53 la figure 6 représente la carte de restriction du vecteur intégratif pTS55 la figure 7 représente la séquence de l'oligonucléotide introduit dans pTS54 afin de construire pTS55; 30. la figure 8 schématise la construction de pTSIl; la figure 9 représente la séquence de l'oligonucléotide introduit dans pTSII afin de construire pTS12 et pTS13 la figure 10 représente la carte de restriction de pTSl; 9 2 631634 l Ia figure 11 représente la carte de restriction du plasmide multicopie pTS12; la figure 12 représente la carte de restriction du plasmide pTS13. EXEMPLE 1: Construction du vecteur intégratif pTS55 Le plasmide pSAM2 (figure 1) a été extrait et purifié de Streptomyces ambofaciens (JI313212) selon la méthode de lyse alcaline décrite par Hopwood dans "Genetic Manipulation of Streptomyces" (A Laboratory Manual, 1985). 1ère étape: Le plasmide pSAM2 a été digéré par l'enzyme de restriction BamHI et un fragment de 7,57 kb (kb: kilobase) a été isolé et cloné au site BamHI du plasmide pBR329, ce qui donne le plasmide pOS210.(figure 4). 2ème étape Le plasmide pOS210 a été digéré par EcoRI et le fragment de 7, 25 kb qui contient le fragment de pSAM2 du site BamHI n 27 au site EcoRI n 33 et le fragment BamHI-EcoRI de 3,55 kb du plasmide pBR329 a été isolé et refermé sur lui-même, ce qui donne le plasmide pOS210A (figure 4). 3ème étape Le plasmide PIJ39 correspond au plasmide pBR322 qui contient le gène conférant la résistance au thiostrepton porté par un fragment BamHI de 1,8 kb de Streptomyces azureus (Thompson C.J.; Ward J.M.; Hopwood D.A., Nature 286, 525-527, 1980). Le plasmide pI339 est digéré par BamHI et le fragment de 1,8 kb portant la résistance au thiostrepton est isolé et mélangé avec le plasmide pOS210A digéré par BamHI (BamHI est un site unique dans pOS210 A). 4ème étape Le plasmide pTS52 contient deux sites BamHI et a une taille de 9,08 kb. Il est digéré partiellement par BamHI et le plasmide linéarisé de 9,08 kb est isolé. Il est traité par le fragment de Klenow de la polymérase I puis refermé sur lui-même pour éliminer un des deux sites BamHI. 2 6 3 1 6 3 4 2631634 Le plasmide pTS54 portant un seul site BamHI localisé entre les sites SphI et Bcl est obtenu (figure 5). ème étape: L'oligonucléotide double brin polylinker ayant la séquence décrite dans la figure 7 est synthétisé avec l'appareil "Applied biosystem". Le plasmide pTS54 digéré par BamHI est mélangé avec l'oligonucléotide polylinker et ligaturé grâce à la ligase du phage T4. Le plasmide résultant pTS55 est décrit dans la figure 6. I1 possède les sites uniques de restriction suivants, disponibles pour les clonages: Xbal, Xhol, HindlI, Kpnl, Sacl, BamHI et Sphl. Le vecteur pTS55 peut être maintenu dans E. coli en sélectionnant pour la résistance à l'ampicilline. Par digestion par l'enzyme de restriction EcoRI la partie pBR329 peut être retirée car elle n'est pas indispensable pour l'intégration dans le chromosome des Streptomyces. On peut donc obtenir des transformants intégratifs de Streptomyces qui ne contiennent que de l'ADN de Streptomyces. Dans les transformants Streptomyces, il confère la résistance à l'antibiotique Thiostrepton ou Nosiheptide. Il porte le fragment BamHI-EcoRI de pSAM2 et la séquence nucléotidique du site Tth Il 1 n 2 au site d'intégration du plasmide localisé entre Bglll et BamHl a été réalisée (voir figure 2) et est décrite dans la figure 3. La phase codante qui part de ia position + 1261 et se termine à la position + 97 correspond à l'intégrase requise pour l'intégration du plasmide dans le chromosome. La phase codante qui part de la position + 1448 et se termine à la position + 1247 peut correspondre au gène xis. La séquence encadrée qui part de la position + 24 à la position - 24 correspond au site d'intégration du plasmide (att). Le nucléotide position 0 correspond au centre du site d'attachement. I1 peut être introduit par transformation dans Streptomyces selon la technique décrite dans le il 1 2631634 "Laboratory Manual". Il s'intègre spécifiquement dans les souches suivan- tes - S. ambofaciens, - S. lividans TK64, - S. griseofuscus. Il peut s'intégrer dans toutes les souches possédant un site d'intégration pour le plasmide. Ce site peut être defini comme ayant une séquence similaire ou comprenant en totalité ou en partie la séquence nucléotidique de la position + 24 à - 24 décrite dans la figure 3. Ce site a été détecté par hybridation avec une sonde-allant de la position + 21 à - 18 (figure 3) dans S. antibioticus, S. bikiniensis, S. parvulus, S. actuosus, S. coelicolor, S. glaucescens. Ce vecteur permet l'intégration d'un gène dans le chromosome à un site spécifique. Il n'y a donc qu'une copie par cellule, l'intégration est très stable et il n'est donc pas nécessaire de maintenir une pression de sélection pour que le gène introduit reste intégre. EXEMPLE 2: Construction et propriétés du vecteur libre pTS39 a) construction Le plasmide pSAM2 originaire de S. ambofaciens JI313212 est digéré partiellement par EcoRI et le plasmide linéarisé de 11 kb est isolé et cloné dans le site EcoRI du plasmide P1J39 (précédemment décrit). Le plasmide résultant pTS39 contient le plasmide pI339 cloné au site EcoRI N 22 du plasmide pSAM2 (carte de restriction pSAM2, figure 1). b) propriétés Le plasmide peut être introduit par transformation dans différentes souches de Streptomyces o il se maintient à l'état libre et intégré en conférant la résistance au Thiostrepton et au Nosiheptide. C'est un vecteur à large spectre d'hôte. Le nombre de copies est compris entre 5 et 20 copies par génome. 12 2363 EXEMPLE 3: Construction et propriétés du vecteur pOS 1i 1ère étape: Le plasmide pOS7 a été décrit dans l'article de J.M. Simonet et al., Gene 59, p. 137-144, 1987. Les deux fragments BamHI de 0,88 kb (BamHI N 15 à 21) et de 1,01 kb (BamHI N 21 à 27) de pSAM2 (figure 1) ont été délétés et remplacés par le fragment BamHI de 1,79 kb de S. azureus conférant la résistance au Thiostrepton et au Nosiheptide. Le plasmide pOS7 et le plasmide pBR322 ont été digérés par EcoRI, mélangés et ligaturés. Le plasmide résultant, pOSll, est obtenu. Il contient pBR322 cloné au site EcoRI N 33 de pSAM2 (voir figure 8). 2ème étape: Par transformation selon le procédé habituel, il est introduit dans S. lividans o il confère la résistance au Thiostrepton et au Nosiheptide. D'un clone de S. lividans transformant on a extrait le plasmide pTSII (figure 8). Ce plasmide ne contient plus le plasmide pBR322 et a subi une délétion de 600 paires de bases situées de part et d'autre du site EcoRI N 33 de pSAM2. Le site PvuII N 1 et le site ApaI N I bis ont disparu (voir carte de restriction pSAM2, figure 1). 3ème étape: Le plasmide pTSII (figure 10) est digéré partiellement par BgIllI afin de linéariser le plasmide qui a une taille de 10,3 kb. Les molécules linéaires ayant la taille du plasmide sont isolées. L'oligonucléotide polylinker ayant la séquence décrite dans la figure 10 est synthétisé. Il est mélangé au fragment BgllI de pTSII et ligaturé. Le plasmide résultant qui porte l'oligonucléotide inséré au site BgllI N 14 est appelé pTS12 (figure 11) et celui qui porte l'oligonucléotide inséré au site BgllI N 28 est appelé pTSI3 (figure 12). De la même manière il serait possible d'insérer un polylinker aux sites BamHI bordant le fragment BamHI de 1,79 kb portant le gène de résistance au Thiostrepton. Les propriétés des vecteurs obtenus sont les suivantes Ces vecteurs grâce à la délétion de part et d'autre du site EcoRI N 33 de pSAM2 se maintiennent à un taux très éleve de copies lorsqu'ils sont introduits dans Streptomyces et notamment Streptomyces lividans TK64. Le nombre de copies est supérieur à 100 par génome. Ils confèrent la résistance au Thiostrepton et portent les sites de clonage HindIII, PstI, Sphl, XbaI, XhoI et EcoRI. Le vecteur pTSI3 est incapable de s'intégrer dans le chromosome et est uniquement autoréplicatif. Le vecteur pTSI2 ne devrait plus être capable de se transférer et ne serait plus conjugatif. Tout vecteur dérivé de pSAM2 contenant cette délétion passe de 10 copies environ à plus de 100 copies. BIBLIOGRAPHIE Batlz R.H., Seno E.T., Stonesifer J. and Wild G.M. (1983) Biosynthesis of the macrolide antibiotic tylosin a preferred pathway from tylactone to tylosin. J. of Antibiotics 36 n 2 131-141. Cox K.L., Baltz R.H. (1984) Restriction of Bacteriophage plaque formation in Streptomyces ssp. J. Bact. 159. 10. Gray G., Seltzer G., Buell G., Shaw P., Escanez S., Hofer S., Voegeli P. and Thompson C.3. (1984) Synthesis of bovine growth by Streptomyces lividans. Gene 1124, 21-30. Kuhstoss S., and Nagaraja Rao R. (1983) Expression in Streptomyces ambofaciens of an Escherichia coli K-12 gene which confers resistance to hygromycin B. Gene 26, 295-299. Matsushima P., Baltz R.H. (1985) Efficient plasmid transformation of Streptomyces ambofaciens and Streptomyces fradiae protoplasts. J. Bact. 163, 180-185. Omura S. (1984) Macrolide Antibiotics: Chemistry, Biology and Practice. 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Vecteur selon l'une des revendications I et 2, caractérisé en ce que les fragments att et int proviennent d'un fragment de pSAM2, qui a été délété d'environ 600 bp de part et d'autre du site EcoRI N 33. 4. Vecteur selon la revendication 3, caractérisé en ce que la délétion porte sur un fragment qui s'étend entre deux séquences répétées. 5. Vecteur selon l'une des revendications 1 à 4, caractérisé en ce qu'il comporte, en outre, les fonctions de transfert fonctionnelles dans ladite souche. 6. Procédé de préparation d'une souche d'Actinomycète produisant une protéine déterminée dont la séquence d'ADN est intégrée dans le chromosome, caractérisé en ce qu'on transforme la souche à l'aide d'un vecteur selon l'une des revendications 1 à 5 dans lequel la séquence d'ADN en cause est insérée à l'extérieur des séquences att et int. 7. Procédé selon la revendication 6, caractérisé en ce que le vecteur est non transférable, la séquence d'ADN codant pour ladite protéine étant insérée dans les séquences codant pour les fonctions de transfert. 2O 6 51 6 8. Procédé de préparation d'une souche d'Actinomycète produisant une protéine déterminée dont la séquence d'ADN est intégrée dans un plasmide non intégrable totalement dans le chromosome, caractérisé en ce que la séquence d'ADN en cause est intégrée dans le gène int. 9. Procédé selon l'une des revendications 6 à 8, caractérisé en ce que la séquence codant pour une protéine déterminée est la séquence codant pour la résistance au Thiostrepton. 10. Souche d'Actinomycète obtenue par mise en oeuvre du procédé selon l'une des revendications 6 à 9. 11. Souche selon la revendication 10, caractérisé en ce qu'il s'agit d'une souche de Streptomyces. 12. Procédé d'obtention d'une protéine déterminée, caractérisé en ce qu'on fait fermenter une souche selon l'une des revendications 10 et 1 1 dans un milieu de culture approprié et en ce que l'on récupère la protéine déterminée.