Brevet FR2619122A1 — publié le 19890210

i La présente invention concerne un procédé d'obtention de polyosides capsulaires de staphyloco- ques et plus particulièrement un procédé d'obtention de polyosides capsulaires caractéristiques de Sta- Dhvlococcus aureus. S. aureus produit un très grand nombre d'antigènes extra- et intra-cellulaires, parmi les- quels de nombreuses toxines et enzymes. L'implication de ces métabolites dans les intoxications alimentaires ou dans la constitution des abcès est bien établie. Par contre, aucune corrélation n'a pu être établie entre la présence de ces antigènes et les propriétés invasives de S. aureus, c'est-à-dire sa capacité à entrainer une septimécie. Les polyosides capsulaires sont des facteurs de pathogénicité bien connus pour des bactéries telles que Streptococcus Dneumoniae. HaemoDhilus influenzae et Neisseria meninqitidis. C'est pourquoi de nombreu- ses tentatives d'isolement de souches de staphyloco- ques capsulés ont été réalisées. Quelques souches cap- sulées ont été décrites dans la littérature (souches Smith, M et T). Cependant, le fait que les souches de S. aureus isolées chez des malades apparaissent dé- pourvues de capsules à l'examen de colonies sur gélo- se, ou à l'examen microscopique des germes, a conduit la majorité des auteurs à conclure que cette bactérie est habituellement non capsulée. Pourtant, dans des publications parues de- puis 1970, Walter W. Karakawa a démontré, d'une part, l'existence de polyosides capsulaires dans plusieurs isolements cliniques de staphylocoques et, d'autre part, que des antigènes capsulaires protégeaient la bactérie de la phagocytose par les polynucléaires. En 1980, Walter Karakawa et Willie Vann (Capsular 2 6 1 9 1 2 2 polysaccharides of Staphvylococcus aureus. p. 285-293. In J.B. Robbins, J.C. Hill, and J.C. Sadoff (ed.). Seminars in infectious disease. vol. 4. Bacterial vaccines. Thieme Stratton. Inc. New York) démontraient par des critères essentiellement immunologiques, l'existence d'au moins 8 types capsulaires de S. aureus. La purification et la caractéristique bio- chimique et immunologique du polyoside capsulaire de type 8 ont été réalisées en 1984 (J.M. Fournier et al, Infect. Immun. 45: 87-93) et une méthode de typage capsulaire de S. aureus a été décrite en 1985 (W.W. Karakawa et al. J. Clin. Microbiol. 22: 445-447). Des études épidémiologiques réalisées sur un grand nombre de souches de S. aureus isolées de mala- des, ont montré que 70 à 80% de ces souches possé- daient l'un ou l'autre des polyosides capsulaires 5 et 8 (par exemple R.D. Arbeit et al. Diagn. Microbiol. Infect. Dis. 2: 85-91. 1984). Des anticorps monoclonaux spécifiques des polyosides capsulaires 5 et 8 ont été préparés (H.K. Hochkeppel et al. J. Clin. Microbiol. 25: 526-530. 1987, et M.J. Nelles et al. Infect. Immun. 49: 14-18. 1985). A côté de Staphvlococcus aureus qui est un staphylocoque coagulase positive, c'est-à-dire qui produit une coagulase libre (voir Bergey's Manual), on connait de nombreuses espèces de staphylocoques qui sont des staphylocoques coagulase négative, c'est-à- dire ne produisent pas de coagulase libre. Ces espèces coagulase négative ont été classées par KLOOS et SCHLEIFER; (Int. J. Syst. Bacteriol: 25, p. 50-61; p. 62-79). Parmi ces espèces coagulase négative, on peut citer: Staph lococcus simulans Staphylococcus xvlosus Staphylococcus cohnii Staphylococcus saprophiticus Staph1lococcus haemolvticus Staphvlococcus warneri Staphvlococcus hominis Staphvlococcus epidermidis Staphylococcus capitis Ces staphylocoques coagulase négative sont habituellement non pathogènes pour l'homme et pour l'animal. Aucun polyoside capsulaire identique à ceux décrits chez S. aureus n'a été identifié dans les cou- ches de staphylocoques coagulase négative. Au contrai- re, M.J. Nelles et al (déjà-cité) ont montré que 3 souches de S. epidermidis ne produisent pas de polyo- side capsulaire de type.5 ou de type 8). Or, la Demanderesse a découvert que certai- nes souches de staphylocoques coagulase négative pro- duisent des polyosides capsulaires identiques à ceux de Staphvlococcus aureus et généralement en des quan- tités plus importantes que Staphylococcus aureus. La fréquence d'isolement de telles souches est environ 2% chez l'homme. La présente invention a en conséquence pour objet un procédé d'obtention de polyosides capsulaires caractéristiques de Staphvlococcus aureus, caractérisé en ce que, pour obtenir ces polyosides capsulaire, l'on utilise des souches de stapylocoques coagulase négative. L'invention a plus particulièrement pour objet un tel procédé, caractérisé en ce: a - on sélectionne parmi des souches de staphylocoques coagulase négative une souche produc- trice d'un polyoside capsulaire caractéristique de Staphylococcus aureus b - on cultive la souche sélectionnée c - on extrait le polyoside capsulaire et d - on purifie le polyoside capsulaire. La présente invention a également pour objet les applications de ces polyosides notamment des vac- cins contre Stapvlococcus aureus et des produits de diagnostic, ainsi que des souches isolées et sélec- tionnées productrices de polyosides capsulaires carac- téristiques de Staphvlococcus aureus. La sélection d'une souche productrice d'un polyoside capsulaire caractéristique de Staphvlococcus aureus peut être aisément réalisée soit à partir de la bactérie intacte, par agglutination d'une suspension bactérienne au moyen d'anticorps spécifiques des polyosides capsulaires de Staphylococcus aureus, notamment d'anticorps monoclo- naux tels que ceux déjà décrits, utilisés en solution ou préalablement fixés par exemple sur un support tel que des particules de latex, - soit par détection du polyoside capsulaire dans des extraits bactériens, obtenus, par exemple, - par lavage des bactéries ou - après lyse bactérienne, obtenue par auto- clavage ou par utilisation d'une enzyme spécifique du staphylocoque telle que la lysostaphine. Le polyoside capsulaire peut être mis en évidence dans ces extraits bactériens par des méthodes immunologiques ou par des méthodes physico-chimiques. Parmi les méthodes immunologiques, on peut citer: - l'immunoprécipitation en gel d'agarose (double diffusion), - l'immunoélectrophorèse en fusée (voir en particulier J.M. Fournier et ai et Hochkeppel et ai déjà cités). L'anticorps spécifique du polyoside capsu- laire est inclus dans un gel d'agarose équilibré dans un tampon à pH 8,6 (pH auquel l'anticorps ne migre pas). L'extrait bactérien est déposé dans un puits creusé dans le gel puis soumis à l'action d'un champ électrique qui fait migrer le polyoside capsulaire éventuellement présent dans l'extrait. Au fur et à mesure de sa migration, le polyoside capsulaire se combine avec l'anticorps et forme un précipité dont le front se déplace jusqu'à ce qu'il n'y ait plus de po- i5 lyoside capsulaire libre. Après séchage, fixation et coloration du gel, la mesure de la hauteur de la flèche observée permet de déterminer la quantité de polyoside capsulaire présent dans l'extrait bactérien. - les réactions immunoenzymatiques de type ELISA. Parmi les méthodes physico-chimiques, on peut citer des méthodes qui mettent en évidence la présence d'un ou de plusieurs constituants du polyo- side capsulaire: - chromatographie en phase gazeuse, - chromatographie liquide sous haute pres- sion, -chromatographie d'échange d'ions, - filtration sur gel, chromatographie d'affinité, - dosages chimiques des sucres aminés. A partir des souches sélectionnées, on ob- tient le polyoside capsulaire en trois étapes: - culture des bactéries, 2619 1 2 2 - extraction du polyoside capsulaire, - purification du polyoside capsulaire. 1) Culture des bactéries: Comme milieu de culture, on peut utiliser notamment le milieu Columbia (Difco), liquide ou so- lide (meilleure production de polyoside capsulaire par des bactéries cultivées sur milieu solide), avec une durée de culture d'une nuit à 37'C par exemple. 2) Extraction du polyoside capsulaire: o Deux procédés peuvent être employés: -autoclavage, - lyse des bactéries par la lysostaphine. a) Extraction par autoclavage: Les bactéries cultivées sur milieu solide sont mises en suspension dans de l'eau physiologique tamponnée (EPT) (5 ml pour une boite de Petri de 9 cm de diamètre), puis autoclavées une heure à 121'C. Après centrifugation, le surnageant est gardé et le culot est à nouveau extrait dans les mêmes conditions. Après centrifugation, les deux surnageants sont re- groupés, dialysés contre l'eau distillée et lyopholi- sés. On obtient ainsi l'extrait brut (EB). Pour 100 boites de Petri, on obtient appro- ximativement 10 g de culot bactérien humide et 2 g d'EB. Les bactéries cultivées en milieu liquide sont tuées par addition de phénol et d'éthanol (1,5 %, 24 h à la température du laboratoire), puis récupérées par centrifugation ou ultrafiltration. Le culot bact- érien est remis en suspension dans de l'EPT (0,1 g de culot humide/ml d'EPT) puis extrait à l'autoclavage dans les conditions décrites précédemment. b) Extraction par la lysostaphine: Le culot bactérien est mis en suspension dans de l'EPT (0,5 g/ml) contenant 25 mg de lysostaphine par litre. La suspension est agitée pendant une nuit à 3 'C, puis centrifugée. Le surnageant est dialysé contre l'eau distillée puis lyophilisé. 3) Purification du polyoside capsulaire: Une méthode avantageuse de purification est la suivante: a) Traitement enzymatique de l'EB: L'EB est repris dans l'EPT (10 mg/ml), traité par la DNase et la RNase (0,1 mg/ml, 6 h à 37'C) puis la protéase (1 mg/ml, une nuit à 37'C). Le produit est ensuite dialysé contre l'eau distillée et lyophilisé. Deux g d'EB donnent approximativement 0,7 g d'extrait traité aux enzymes (ETE). Ce traitement permet d'éliminer la plus grande partie des protéines et des acides nucléiques. b) Chromatographie d'échange d'ions: L'ETE est repris dans un tampon acétate de sodium (0,05 M, pH 6) contenant du chlorure de sodium (0,1 M) puis passé sur un échangeur d'ions (par exem- ple de la DEAE-cellulose) équilibré avec le même tam- pon. La plus grande partie des protéines contenues dans l'ETE ne sont pas absorbées sur l'échangeur d'ions et sont donc éliminées par un lavage de l'échangeur d'ions avec le tampon d'équilibrage. Par contre, le polyoside capsulaire, l'acide teichoique et les acides nucléiques, restent fixés sur l'échangeur d'ions. Le polyoside capsulaire est élué en faisant passer sur l'échangeur d'ions un tampon contenant une concentration plus élevée de chlorure de sodium. A titre d'exemple, le polysoide capsulaire de type 5 est élué avec un tampon acétate de sodium (0,05 M, pH 6) contenant du chlorure de sodium à la concentration de 0,15 M. Pour éluer le polyoside capsulaire de type 8, la concentration de chlorure de sodium doit être de 0.18 M. Les éluats sont recueillis dans un collecteur de fractions, et les fractions qui contiennent du po- lyoside capsulaire (détecté par une réaction immuno- logique utilisant des anticorps spécifiques) sont re- groupées, dialysées contre l'eau distillée puis lyo- philisées. On obtient approximativement 20 mg d'extrait purifié sur échangeur d'ions (EEI) à partir de 0,7 g d'ETE. Cette chromatographie d'échange d'ions permet d'éliminer la plus grande partie des protéines, des acides nucléiques et de l'acide teichoique. c) Filtration sur gel: L'EEI est reconstitué dans une solution de chlorure de sodium (0,2 M), et filtré sur un gel de Sepharose 4B-CL. Les fractions contenant du polyoside capsulaire, détecté par réaction immunologique, sont regroupées, dialysées contre l'eau distillée et lyo- philisées. Le produit lyophilisé constitue le polyo- side capsulaire purifié. Ce polyoside capsulaire est contaminé par moins de 1% de protéines, moins de 0,5% d'acides nu- cléiques et moins de 0,05% d'acide teichoique. A par- tir de 20 mg d'EEI, on obtient approximativement 10 mg de polyoside capsulaire purifié. Finalement, & partir de 10 g de culot bactérien humide récolté sur 100 boites de Petri, on obtient approximativement 10 mg de polyoside capsulaire purifié. A titre d'exemple on a isolé les souches suivantes de staphylocoque coagulase négative produi- sant du polyoside capsulaire identique à celui de Staphylococcus aureus. Pour la sélection des souches productrices de polyoside capsulaires caractéristiques de Staphv- lococcus aureus, on a mis au contact de la suspension bactérienne, une quantité d'anticorps spécifiques de ces polyosides capsulaires. La détection des polyosi- des capsulaires obtenus après lyse bactérienne, a été faite par immunoélectrophorèse en fusée (technique décrite par J.M. FOURNIER déjà cité) ou par Elisa. Chaque souche hautement productrice de polyosides capsulaires a été caractérisée par ces deux techniques. lO Numéro de Nurro de 850206 860638 850071 850279 la souche :: :: :C :Zum ro de: ::: dépôt à la I-685 1-682 1-684 1-683 CNèMv CNC *:: ::: :: : -: :: Cocci : Cocci: Cocci: Cocci: : Morphologie: gram: gram: gram: gram: ::positif : positif: positif: positif: : 'Catalase:: + : . ::: * :::wt : Fermentation::::: :du glucose: +: +: +: : en milieu:: : : MEVAG:::: * * * e : DNAse: :: :: * ::: : Coagulase: -: -: -: -: * t * t : T yp e: Type: 5 5 8 8: : capsulaire::::: ::: : :-: -: -: -:)lOITTAX À ::: ::: ::: ::: __ _ _: 1aoquuew-a: : -:: -:::UH-: ::: - : + + *+*: asoTlsn9Jj-: ::: ::: : +::+ : +: -: + + + _ aso;rew: :::: : :::: : * + t ++ asolg-0: : +: +: +: -: $001: :::: :: o +: aou-: : +: +: +: +: eOTN: :::: :: + +: +: +: asouan.-a: :: : --::: : Àd'eqS + dy:: + À+ e esoonTT-P: : -::: :: :-+: +: +: +: soonlT9-0: :::: : l : -::: : eqonosej ap: : 6LZO8: LLO058: 8ú9098: 90Z058: oJPWnN: :seuaTns MdS TdV eaB1sAs el d enbFTmDToTq uoT;oT; T;uepTp sanbT;sTXGqEDD sel quaeuasgad satinos seD ZZL6L9Z C zA x mt M 'aJL 'anz -, IfiItD cw C3.00- - c. 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Ln)LLn q.4.q., * *.** q,q".,.5. q.q.,9 *qq.5,q.. q. q. q.q. q. q.q. q.q*q..*qq.5 *q qtq. etouetq.q.Sqet** * *et s0' (n (nLn A titre d'exemple, la mise en oeuvre du pro- cédé d'obtention des polyosides capsulaires extraits par autoclavage de 109 bactéries a permis d'obtenir les quantités indiquées dans le Tableau ci-après. Ces valeurs ne sont qu'indicatives, car la production de polyoside capsulaire est assez variable d'une culture à l'autre. Numéro Espèce Type Production de. la Capsulaire de polyoside Souche capsulaire (microgrammes) 850206 S. haemolvticus 1 5 30 860638 S. hominis 2 5 4 850071 S. hominis 2 8 20 850279 S. hominis 2 8 5 Les polyosides capsulaires obtenus à partir de souches de staphylocoque coagulase négative peuvent être utilisées pour: a) la préparation de vaccins contre StaDhv- lococcus aureus, à usage humain ou vétérinaire, en vue - d'une protection individuelle ou - de l'obtention de sérums immuns utilisables pour la préparation d'anticorps anti-polyoside capsu- laire pouvant être utilisé en immunothérapie passive ou pour le diagnostic par des techniques d'agglutina- tion, ELISA, RIA ou Western blot selon des méthodes connues de l'homme de l'art; b) la préparation de produits de diagnostic pour un diagnostic chez l'homme, chez l'animal ou dans des produits agro-alimentaire, et notamment pour: - la détection dans des produits biologiques d'anticorps spécifiques du polyoside capsulaire, -5 ou - la détection de polyoside capsulaire dans des isolements cliniques de staphylocoques coagulase positive ou coagulase négative. REVENDICATIONS 1 - Procédé d'obtention de polyosides cap- sulaires caractéristiques de Staphvlococcus aureus, caractérisé en ce que, pour obtenir ces polyosides capsulaires, on utilise des souches de staphylocoques coagulase négative. 2 - Procédé selon la revendication 1, carac- térisé en ce que: a - on sélectionne parmi des souches de sta- phylocoques coagulase négative une souche productrice d'un polyoside capsulaire caractéristique de StaDh - lococcus aureus b - on cultive la souche sélectionnée c - on extrait le polyoside capsulaire et d - on purifie le polyoside capsulaire. 3 - Procédé selon la revendication 2, ca- ractérisé en ce qu'on sélectionne une souche de sta- phylocoque coagulase négative productrice d'un polyo- side capsulaire caractéristique de Staphvlococcus aureus par réaction d'agglutination au moyen d'anti- corps spécifiques des polyosides capsulaires de Sta- Phvlococcus aureus. 4 - Procédé selon la revendication 2, ca- ractérisé en ce qu'on sélectionne une souche de sta- phylocoque coagulase négative productrice d'un polyo- side capsulaire caractéristique de Staphvlococcus aureus par détection du polyoside capsulaire dans un extrait bactérien de la souche. - Procédé selon la revendication 4, ca- ractérisé en ce que l'extrait bactérien est un extrait obtenu par lavage des bactéries. 6 - Procédé selon la revendication 4, ca- ractérisé en ce que l'extrait bactérien est un extrait obtenu après lyse bactérienne. 7 - Procédé selon l'une quelconque des re- vendications 1 à 6, caractérisé en ce qu'on extrait le polyoside capsulaire après autoclavage. 8 - Procédé selon l'une quelconque des re- vendications 1 à 6, caractérisé en ce qu'on extrait le polyoside capsulaire après lyse des bactéries par un agent de lyse. 9 - Procédé selon l'une quelconque des re- vendications I à 8, caractérisé en ce qu'on purifie le polyoside capsulaire extrait par traitement enzymati- que, suivi d'une chromatographie d'échange d'ions et d'une filtration sur gel. - Procédé selon l'une quelconque des re- vendications 1 à 9, caractérisé en ce.qu'on utilise une souche de staphylocoque coagulase négative déposée à la CNCM sous les numéros 1-682, 1-683, 1-684 ou 1-685. 11 - Polyoside capsulaire obtenu par un pro- cédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 10. 12 - Vaccin contre Staphyloccocus aureus obtenu à partir d'un polyoside selon la revendication 11. 13 - Produit de diagnostic obtenu à partir d'un polyoside selon la revendication 11, pour le diagnostic des staphylocoques coagulase positive ou négative. 14 - Souches purifiées de staphylocoque coagulase négative productrices de polyoside capsu- laire caractéristique de Staphvlococcus aureus. 15 - Souches selon la revendication 14 qui sont les souches déposées à la CNCM sous les numéros 1-682, 1-683, 1-684 et 1-685. 16 - Utilisation des souches selon la reven- dication 14 ou la revendication 15 pour l'obtention de polyosides capsulaires caractéristiques de StaDhvlo- coccus aureus.