Brevet FR2616800A1 — publié le 19881223

La présente invention concerne un procédé de production d'une enzyme fongique et son utilisation à l'hydrolyse de la glycyrrhizine pour obtenir des extraits de réglisse à teneur réduite en glycyrrhizine ou pour obtenir de l'acide 18 e-glycyrrhétinique. On sait en effet que la glycyrrhizine est à l'origine de problèmes cardio-vasculaires, notamment accroissement de la tension artérielle chez des sujets sensibles. Pour certains usages, il est souhaitable de réduire la teneur en glycyrrhizine ou même de supprimer sa présence dans les extraits de réglisse. Par ailleurs, l'acide 18 e-glycyrrhétinique est un médicament reconnu qui intervient dans de nom- breuses thérapeutiques. Plus précisément, la présente invention concerne les enzymes B-glucuronidases. On sait que les e-glucuronidases sont des enzymes capables d'hydrolyser des 8-glucuronides et de réaliser le transfert des radicaux glucuronyls sur les alcools, selon le schéma: COOH COOH OR ROH OH H + 1420O C >: H OH H OH Or la glycyrrhizine est un éther diglucuro- nique-de l'acide 18 B glycyrrhétinique et donc hydroly- sable par de telles enzymes avec production d'acide 18 B glycyrrhétinique. De nombreux auteurs ont déjà décrit plusieurs B-glucuronidases issues de sources diverses: foie de souris, glande préputiale de la femelle du rat, embryon de Xenopus laevis, Locusta migratoria, Helix pomatia, Patella vulgata, Scutellaria baicalensis. Plusieurs glucuronidases de microorganismes sont connues comme celles d'Escherichia coli, de strep- tocoques, d'Aeromonas hydrophila, Aeromonas punctata, Aeromonas salmonicide. Le but de la présente invention est d'obtenir une S-glucuronidase microbienne très active, notamment vis-à-vis de l'hydrolyse de la glycyrrhizine. Pour ce faire, à partir d'échantillons d'eaux, de sols, de denrées alimentaires, on a isolé plusieurs micro-organismes se développant en synthé- tisant une B-glucuronidase active. La présente invention a en effet pour objet un procédé de production d'une enzyme du type $-glucu- ronidase comportant la culture d'un micro-organisme, effectuée dans un milieu comportant au moins une source de carbone et une source d'azote, et l'extraction et la purification de l'enzyme à partir de la bicmasse et/ou du milieu de culture, caractérisé en ce que l'enzyme est produite par la culture d'un micro-organisme du type Aspergillus ' ou de ses variants et mutants. Parmi ces micro-organismes on peut citer avantageusement les AsDerqillus terreus et Aspergillus niqer dont on a découvert qu'ils avaient la propriété de synthétiser une e-glucuronidase très active et très stable dans l'alcool et à la chaleur. Notamment parmi ces micro-organismes producteurs,on peut citer la moisissure, dont les caractéristiques morphologiques et biochimiques montrent qu'il s'agit d'Aspergillus terreus. Cette moi- sissure a été isolée à partir de denrées alimentaires. Ses caractéristiques microbiologiques sont les suivantes: production de conidies chamois à brunes, avec pigmen- tation jaune ocre de la gélose, têtes conidiennes biseriées, hémisphériques; les métules ne couvrant que la moitié supérieure de la vé- sicule avec présence de conidies globuleuses. Les caractéristiques de la moisissure d'As- Dergillus terreus ne sont pas limitées à ce qui est mentionné ci-dessus, cette moisissure étant susceptible d'être modifiée artificiellement ou naturellement. Mais, pourvu qu'elle possède au moins la capacité de produc- tion de la 8-glucuronidase, il va sans dire que les variantes et mutantes de cette moisissure peuvent aussi être utilisées dans le procédé de l'invention. Par conséquent, il est entendu que parmi les espèces de moisissure avantageuses utilisées dans la présente invention, il faut englober en plus des moi- sissures Aspergillus terreus et Aspergillus niger, les variantes et mutantes qui possèdent la plupart des pro- priétés distinctives des deux moisissures génératrices. lesculturesd'Aspergillus sont effectuées sur un milieu convenable contenant au moins une source de carbone, une source d'azote et une substance inor- ganique de préférence. La source de carbone peut être de préférence la glycyrrhizine, du jus de réglisse, ou toutesautres sourcesde carbone contenant un ou plusieurs glucuronides. La source d'azote est constituée avanta- geusement d'un sel d'ammonium, de sels de nitrate, d'acides aminés ou de toutes autres sources d'azote conventionnelles. Le mono-ammonium de glycyrrhizinate peut être utilisé comme seule source de carbone et d'azote. La croissance est meilleure quand on ajoute au milieu de culture des sels minéraux, tels que du sulfate de magnésium, du chlorure de calcium, du sulfate de fer, du sulfate de cuivre, du molybdate de sodium, du chlorure de calcium, du sulfate de manga- nèse, ou tous sels inorganiques pouvant favoriser la croissance des moisissures. De même, l'addition de vitamines telles que l'acide folique, la biotine, la choline, la nicotina- mide, le panthothénate de calcium, le pyridoxal, la thiamine, la riboflavine, ou toute autre vitamine, favorise la croissance des moisissures Aspergillus, notamment Aspergillus terreus et Aspergillus niger produisant la $-glucuronidase. Bien entendu, les proportions des sources de carbone, d'azote et des sels inorganiques, ainsi que la composition du milieu lui-même peuvent varier suivant les facultés d'adaptation de la moisissure qui est utilisée pour la production de $-glucuronidase. Comme température optimale pour le développe- ment de ces micro-organismes, on peut utiliser nor- malement une température comprise entre 28 C et 45eC et de préférence entre 37 C et 44 C. Le pH du milieu particulièrement approprié peut être compris entre 6 et 8. La culture est effectuée pendant une période de dix jours. Bien que la culture puisse être effectuée en milieu solide ou liquide, on obtient de meilleurs résultats en milieu liquide. De préférence, la culture est réalisée dans des conditions convenant aux micro-organismes aérobies. - Au laboratoire, les meilleurs résultats sont obtenus en utilisant 500 ml de milieu de culture dans un erlen de deux litres, ensemencés avec des spores d'Aspergillus terreus ou des spores d'Aspergillus niger. Les meilleurs résultats sont obtenus en uti- lisant 500 ml de milieu de culture dans un erlen de deux litres, ensemencés avec des spores d'Aspergillus terreus ou des spores d'Aspergillus niger. Pendant les premiers jours de la croissance, l'activité eglucuronidasique est localisée dans les cellules, aussi bien sur un milieu liquide, que sur un milieu solide. Ensuite, la e-glucuronidase est excrétée dans le milieu de culture. L'invention a également pour objet un procédé comportant l'extraction de l'enzyme à partir du mycélium Aspergillus obtenu en milieu liquide ou solide, ou à partir de la phase surnageante des cultures et sa puri- fication, caractérisé en ce que lorsque la solution enzymatique extraite contient de la e-glucuronidase complexée avec de l'acide 18 eglycyrrhétinique, ladite solution est additionnée d'urée dissociant le complexe, puis les deux produits sont séparés après élimination de l'urée. En effet, on peut préparer la -glucuronidase, à partir du mycélium d'Aspergillus,par exemple d'Argellus terreus obtenu en milieu liquide ou en milieu solide, ou à partir de la phase surnageante des cultures liquides. Pour obtenir la 8-glucuronidase à partir du mycélium, on réalise une séparation par centrifugation du mycélium et du milieu de culture liquide. Le mycélium est cassé par exemple dans un broyeur à bille comme du type Bead Beater. La B-glucuronidase est séparée des débris cellulaires par centrifugation. Dans le cas o la moisissure est cultivée sur un milieu solide, le mycélium est récupéré en grattant la surface du milieu de culture. Le mycélium est cassé et l'enzyme est séparée des débris cellulaires comme précédemment. Toutes ces premières étapes de séparation du mycélium et de l'enzyme peuvent se dérou- ler à température ambiante ou à 4 C. Pour obtenir la e-glucuronidase par exemple d'Aspergillus terreus à partir d'une culture liquide âgée, donc une culture qui possède une activité 8- glucuronidasique dans le mycélium et dans le milieu de culture, on peut procéder de la manière suivante: le volume de culture est filtré sur étamine, cette filtration permet de séparer le surnageant et le mycé- lium, qui sont ensuite traités séparément. On lave le mycélium avec de l'eau osmosée et on filtre à nouveau la suspension mycélienne ainsi obtenue sur étamine. Le mycélium lavé est récolté, puis cassé par exemple dans un broyeur à billes. La e-glucuronidase est ensuite séparée des débris cellulaires par centrifugation à 15 000 g à 4 C pendant trente minutes. Après centrifugation, on précipite les substances contenues dans le surnageant en ajoutant du chlorure de sodium (0,285 M). Le précipité est séparé de la phase liquide par centrifugation. Le culot contient des molécules biologiques, de la gly- cyrrhizine et de l'acide glycyrrhétinique. La B- glucuronidase se trouve dans le surnageant. Sur ce surnageant, on opère une ultrafiltration à l'aide d'un support dont le pouvoir de coupure moyen permet de retenir toutes les molécules dont le poids moléculaire moyen est supérieur à 10 000 daltons (la concentration peut être réalisée avec des supports de filtration ayant un pouvoir de coupure inférieur ou égal à 10 000 daltons). La solution enzymatique concentrée contenant la Bglucuronidase est alors envoyée sur une colonne d'échange d'ions type diéthylaminoéthyl pouvant être chargée avec des groupes fonctionnels divers, ou sur une autre matrice possédant les mêmes propriétés. La colonne est équilibrée à pH 7, la chromatographie d'échange d'ions peut être indiffé- remment réalisée à la température ambiante ou à 4 C. Après filtration de la e-glucuronidase, on applique sur la colonne un gradient croissant de chlorure de sodium allant de 0 à 0,75 M en chlorure de sodium. Le sel est mélangé, avant son application, au tampon qui a servi à équilibrer la colonne. On récupère la e- glucuronidase dans le tampon de sortie, quand la mola- rité en chlorure de sodium à l'intérieur de la colonne de chromatographie atteint 0,2 M en chlorure de sodium. La B-glucuronidase ainsi partiellement puri- fiée est concentrée par ultrafiltration sur une membrane dont la porosité permet d'exclure des molécules dont le poids moyen est inférieur à 10 000 daltons. Une chromatoqraphie d'exclusion sur un Qel, tel aue les SéDhadex G75, G100, G150, G200, les ultra- gels ACA 44, ACA 34 et ACA 22, et tous les gels qui permettent de séparer les molécules en fonction de leur poids moléculaire, est ensuite utilisée pour ter- miner la purification de la e-glucuronidase d'Aspergillus terreus. Le traitement du surnageant obtenu après fil- tration sur étamine est identique à celui du milieu de culture débarrassé du mycélium d'Aspergillus terreus. Il comprend les étapes suivantes: le surnageant ou le milieu de culture acellulaire est ultrafiltré à l'aide d'une membrane dont le pouvoir de coupure moyen permet de retenir la B-glucuronidase. La solution enzymatique concentrée contenant la e-glucuronidase est alors envoyée sur une colonne d'échange d'ions, type diéthyl- aminoéthyl, pouvant être chargée avec des groupes fonc- tionnels divers, ou sur une autre matrice possédant les mêmes propriétés. Le protocole de purification est ensuite identique à celui adopté pour purifier la e-glucuronidase à partir de l'extrait cellulaire conte- nant le mycélium broyé. Après l'ultrafiltration, la solution enzyma- tique contenant la e-glucuronidase peut contenir de l'acide 18 eglycyrrhétinique en quantité suffisante pour troubler le milieu et gêner la purification. On ajoute alors dans la suspension de l'urée jusqu'à obte- nir une concentration molaire en urée. La présence de l'urée permet de dissocier la complexe acide 18 - - glycyrrhétinique et B-glucuronidase facilitant ainsi la récupération des deux produits. On élimine l'urée en réalisant une chromatographie d'exclusion sur un gel de type Séphadex G10 ou G25, ou tout autre gel se pratant bien aux opérations de tamisage moléculaire et possédant des domaines d'exclusion proches de ceux des Séphadex G10 ou G25. La solution enzymatique contenant la - glucuronidase est alors envoyée, comme on l'a décrit plus haut, sur une colonne d'échange d'ions de type diéthyl- aminoéthyl pouvant être chargée avec des groupes fonc- tionnels divers ou sur une autre matrice possédant les mêmes propriétés. Le protocole de purification est ensuite identique à celui adopté pour purifier la e-glucuronidase à partir de l'extrait cellulaire conte- nant le mycélium broyé. On a mis au point une autre technique de séparation de l'acide 18 $glycyrrhétinique et de la $-glucuronidase en précipitant l'activité e-glucuronidasi- que avec du sulfate d'ammonium à 80 % de saturation. Le précipité est séparé de la phase liquide par filtration sur étamine. On ajoute alors au précipité de l'urée jusqu'à obtenir une concentration molaire en urée. Après dissociation de la e-glucuronidase et de l'acide 18 $-glycyrrhétinique, on élimine l'urée en réalisant une chromatographie d'exclusion sur un gel de type Séphadex G10 ou G25, ou tout autre gel se prêtant bien aux opérations de tamisage moléculaire et possédant des domaines d'exclusion proches de ceux des Séphadex G10 ou G25. La solution enzymatique contenant la $-glucu- ronidase est alors envoyée comme on l'a décrit plus haut Z616800 sur une colonne d'échange d'ions de type diéthylamino- éthyl, pouvant être chargée avec des groupes fonctionnels divers, ou sur une autre matrice possédant les mêmes propriétés. Le protocole de purification est ensuite identique à celui adopté pour purifier la eglucuroni- dase à partir de l'extrait cellulaire contenant le mycélium broyé. La présente invention a également pour objet une nouvelle enzyme de type 8-glucuronidase, caracté- risée en ce qu'elle est obtenue par le procédé selon l'invention. Ces enzymes e-glucuronidases sont caractérisées par un maximum d'activité entre 40 et 50 C, de préférence C et à pH entre 5 et 7, de préférence 6. Notamment, la a-glucuronidase d'Aspergillus terreus, ainsi purifiée, pourvu qu'elle soit placée en phase aqueuse, possède un maximum d'activité à 45 C, confère 100 % de son activité entre 43 et 48 C et 83 % de son activité à 60 C vis-à-vis de la phénolphtaléine glucuronidase. La S-glucuronidase d'Asperqillus terreus a un maximum d'activité à pH 6 quand elle se trouve en phase aqueuse. Elle conserve 80 % de son activité à pH et à pH 7. Cette e-glucuronidase exempte d'activité sulfatase a une meilleure affinité vis-à-vis de la glycyrrhizine que les enzymes actuellement disponibles. La présente invention a donc également pour objet un procédé d'hydrolyse d'une solution de gly- cyrrhizine ou d'extraits végétaux en contenant et contenant ou non de l'alcool éthylique jusqu'à 20 % en volume, caractérisé en ce qu'on ajoute à la solution de la B-glucuronidase obtenue par le procédé selon la présente invention. Il est à noter en effet que, de manière très intéressante, la présence d'éthanol n'inhibe pas l'hydro- lyse de la glycyrrhizine par cette enzyme pour autant qua la concentration en alcool reste inférieure à 20% en volume. Avantageusement, on opère à pH entre 4,5 et 6,5, et de préférence 5,5. De même, la température la plus appropriée sera comprise entre 35 et 55 C, de préférence 45 C. Les enzymes B-glucuronidases obtenues à partir de cultures d'Aspergillus, notamment d'Aspergillus terreus selon les procédés décrits précédemment (enzymes intra- et extra-cellulaires) sont donc particulièrement intéressantes vis-à-vis de leur action envers la glycyrrhizine. Lorsque l'on suit l'hydrolyse de la glyclrrhi- zine en HPLC, sous l'action de l'enzyme, on constate une diminution de la teneur en glycyrrhizine et l'apparition d'acide 18 B-glycyrrhétinique, ainsi qu'un pic de polarité intermédiaire qui est le mono-glucuronide de l'acide 18 e-glycyrrhétinique. Lorsque la réaction est arrivée à completion, ce pic intermédiaire est extrêmement faible et on récupère l'acide 18 8-glycyrrhétinique qui a ce pH précipite. On obtient l'acide 18 B-glycyrrhétinique cristallisé pur, ce qui représente un avantage très im- portant par rapport aux méthodes actuellement utilisées pour produire l'acide 18 B-glycyrrhétinique par hydro- lyse chimique de la glycyrrhizine. Quand on hydrolyse la glycyrrhizine en phase aqueuse avec la $glucuronidase d'Aspergillus terreus, on obtient de l'acide 18 eglycyrrhétinique avec un rendement pouvant aller jusqu'à 90 %. -La présente invention a donc également pour objet un procédé de production d'acide 18 $-glycyrrhé- tinique, caractérisé en ce qu'on hydrolyse la giycyrrhi- zine ou un extrait végétal en contenant selon le procédé d'hydrolyse de la glycyrrhizine de l'invention. En effet, comme on l'a vu précédemment, l'enzyme isolée à partir d'Aspergillus terreus par exemple permet une hydrolyse complète de la glycyrrhizine et la récupération quantitative de l'acide 18 e-glycyrrhé- tinique qui précipite de la solution aqueuse ou qui peut être extrait par un solvant organique. Enfin, la présente invention a pour objet des extraits de réglisse pouvant contenir ou non de l'alcool éthylique, caractérisés en ce qu'ils présentent une teneur réduite ou nulle en glycyrrhizine et dépour- vue d'acide 18 B-glycyrrhétinique. L'hydrolyse de la glycyrrhizine, selon le procédé de l'invention, a en outre l'avantage qu'elle conserve l'intégralité des autres constituants de la réglisse. D'autres avantages et caractéristiques de la présente invention apparaîtront à la lumière des exemples qui suivent. EXEMPLE I Aspergillus terreus est ensemencé sur un milieu liquide dont la composition est la suivante: - mono-ammonium de glycyrrhizinate 8 g/1 tampon phosphate KH2PO4 1,36 g/l - nitrate d'ammonium 1 g/l - solution a 10 ml/l - solution b 10 ml/l - le pH de ce milieu est fixé à 6,5 La composition de la solution a est la suivante: - MgSO4 6 g/l - CaCl2, 2H20 0,015 g/l - FeSO4, 7H20 0,028 g/1 - ZnSO4 7HO 1,14 g/l -ZnSO4, 720 -CuSO4, 4H2O 0,025 g/l -Na2 Mo O, 2H2 0,024 g/l -CaCl, 6H2O 0,024 g/l -MnSO4, H20 0,084 g/l La composition de la solution b est la suivante: - acide folique 1 mg/1 - choline 1 mg/1 - inositol 1 mg/l - nicotinamide 1 mg/1 panthothénate 1 mg/1 - pyridoxal 1 mg/1 - thiamine 1 mg/1 - riboflavine 0, 01 mg/1 Le mono-ammonium de glycyrrhizinate et la solution b sont stérilisés par filtration sur des mem- branes de porosité égale à 0,22 g4, avant d'être incor- porés au milieu de culture qui, lui, est stérilisé par la chaleur à 120 C. A partir d'une culture d'un litre d'Asperg. llus terreus âgée de quinze jours et ayant poussé à 37 C, on a mis en évidence que 25 % de l'activité glucuronidase se trouve dans le surnageant et 75 % sous forme intra- cellulaire. On réalise un dosage de l'activité 8-glucuro- nidase à 37 C pendant trente minutes, en ajoutant cent microlitres de la solution enzymatique dans 2 ml de tampon phosphate 20 mM à pH 7 contenant de la phénol- - 4 phtaléine glucuronidate 1,92.10 M. Au bout de trente minutes, la réaction est arrêtée par addition de 3 ml de tampon glycine 0,024 M - NaOH 0,04 M à pH 10,5. La densité optique est lue à 540 nanomètres. L'unité -glucuronidase est la quantité d'enzyme libérant 1 gg de phénolphtaléine par heure à pH 7. On centrifuge le milieu de culture dans une centrifugeuse type BECKMAN réfrigérée à 4 C, à 15 000 g pendant trente minutes. Le surnageant de centrifugation est traité séparément du culot mycélien. On concentre le surnageant obtenu après centri- fugation, qui est semblable à l'extrait que l'on peut réaliser en filtrant le milieu de culture sur étamine, sur une membrane type AMICON XM 10. Cette opération est renouvelée plusieurs fois à 4 C, de façon à obtenir une fraction enzymatique à pH 7 et possédant-une force io- nique inférieure à la force ionique du tampon qui est ensuite employé pour la chromatographie d'échange d'ions. 2 61800U La solution enzymatique ainsi préparée est envoyée par. l'intermédiaire d'une pompe périlstatique au sommet d'une colonne contenant une matrice de diéthylaminoéthyl type DEAE Sépharose CL6B. On lave la matrice avec le tampon qui a été utilisé lors de la fixation de l'enzyme sur la matrice. On applique ensuite un gradient salin allant de 0 à 0,1 M en chlorure de sodium, sans changer le pH du tampon. On récupère l'enzyme dans le tampon de sortie quand la molarité en chlorure de sodium dans la colonne atteint 0,02 M. On élimine le chlorure de sodium et on con- centre la solution enzymatique issue de la chromato- graphie d'échange d'ions sur une membrane AMICON XM 10. La solution enzymatique concentrée est envoyée ensuite sur une colonne de chromatographie d'exclusion, chargée avec de l'Ultrogel ACA 34, la phase aqueuse étant constituée d'un tampon phosphate à pH 7 et de chlorure de sodium à 0,1 M. Après cette étape, la $-glucuroni- dase libre ou fixée peut être utilisée pour la scission enzymatique de la molécule de glycyrrhizine et l'obten- tion d'acide 18 e-glycyrrhétinique. EXEMPLE 2 On récupère le surnageant d'une culture âgée de quinze jours, par filtration sur étamine. Puis on ajoute de l'urée en poudre jusqu'à obtenir une concentration en urée égale à 1 M. Cette fraction est ensuite envoyée sur une colonne de tamisage moléculaire dont le domaine de frac- tio.nnement permet de séparer des protéines ayant un poids moléculaire compris entre 1 000 et 5 000 daltons. En tête de colonne, on obtient l'activité B-glucuronidase, tandis que l'acide 18-e-glycyrrhéti- nique est récupéré en fin de chromatographie. L'acide 18-$-glycyrrhétinique peut être puri- fié à l'aide d'une extraction au chloroforme ou bien d'une précipitation. EXEMPLE III L'enzyme a été comparée aux autres e-glucuro- nidases commerciales. Pour chaque enzyme, on a utilisé l'activité ainsi définie: 1 unité enzymatique libère 1 mg de * phénolphtaléine à partir de glucuronide de phénolphta- léine par heure à 370Cau pH optimum de l'enzyme. Tous les essais ont été conduits pendant 16 h à 40' en utili- sant 0,2 mg de glycyrrhizine et 40 unités enzymatiques. Pour chaque enzyme,le pH optimum d'activité vis-à-vis de la glycyrrhizine a été déterminé. Dans tous les cas un pH=5 convenait très bien. ORIGINE DE L'ENZYME ACIDE 18 B-GLYCYRRHETINIQUE FORME EN % Aspergillus terreus 67 Patella vulqata 59 Abalone 44. Hélix Pomatia 42 1 r 5 mg de glycyrrhizine dans 3 ml d'eau, ajustés -à pH 5,2 sont additionnés de 1.000 unités enzymatiques de e-glucuronidase d'Aspergillus terreus. Apres 48 h à 40 C,on récupère 2,4 mg d'acide 18 e-glycyrrhéti- nique. 2) 5 mg de glycyrrhizine sont dilués dans 2 ml d'eau, le pH est ajusté à 5,2 et on rajoute 0,5 ml d'éthanol et 500 unités enzymatiques. On laisse 48 h à 40 C.On centrifuge le précipité formé, constitué de 18 S-glycyrrhétinique pur. On rajoute 2,5 mg de gly- cyrrhizine, puis on laisse à 40 C/2 jours. On centri- fuge à nouveau le précipité et on recommence la même opération trois fois de suite. On a ainsi pu hydrolyser mg de glycyrrhizine avec 500 unités de e-glucuro- nidase en huit jours à 40 C.Cette expérience montre la grande stabilité de cette enzyme. 3) 4 mg de glycyrrhizine sont dilués dans 4 ml d'eau, le pH est ajusté à 5,2 et on ajoute 1.000 uni- tés d'enzyme et 2 ml d'acétate d'éthyle. On laisse sous agitation pendant 48 h à température ambiante. On récupère dans la phase acétate d'éthyle 1,75 mg d'acide 18 eglycyrrhétinique pur, soit 85 % de la dose théorique. 4) A 5 ml d'un extrait de réglisse hydroalcoolique à 20 % envolume d'alcoolajusté à pH5,3 etcontenant 41 mg de glycyrrhizine, on ajoute 2.500 unités de $-glucuro- nidase. On laisse 48 h à 40QC et on centrifuge à 0C. Le surnageant ne contient alors que 11 mg de glycyrrhizine, des traces de mono-glucuronide de l'acide 18 $-glycyrrhé- tinique, ainsi que l'intégralité des autres constituants de la réglisse, en particulier les chalcones qui con- fèrent la couleur aux extraits de réglisse. Ainsi donc l'enzyme extrait d'Aspergillus terreus permet de ré- duire fortement, voire complètement, la teneur en gly- cyrrhizine d'extraits de réglisse utilisés en Industrie Alimentaire, sans modifier les autres constituants de la plante. REVENDICATIONS 1. Procédé de production d'une enzyme du type 8-glucuronidase comportant la culture d'un micro- organisme, effectuée dans un milieu comportant au moins une source de carbone et une source d'azote, et l'ex- traction et la purification de l'enzyme à partir de la biomasse et/ou du milieu de culture, caractérisé en ce que l'enzyme est produite par la culture d'un micro- organisme du type Aspergillus ou de ses variants et / mutants. 2. Procédé selon la revendication 1, caractérisé en ce que le microorganisme Aspergillus est choisi parmi des Asperqillus terreus et Aspergillus niger. 3. Procédé selon la revendication 1 ou 2, caractérisé en ce que la source de carbone est une subs- tance contenant un ou plusieurs glucuronides. 4. Procédé selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce que la production de l'enzyme est induite par la présence de glycyrrhizine dans le milieu de culture, comme source de carbone. 5. Procédé selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce que la culture d'Asper- gillus est effectuée dans un milieu contenant comme source d'azote des substances choisies parmi des sels d'ammonium, des sels de nitrate ou des acides aminés. 6. Procédé selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce que le mono-ammonium de glycyrrhizinate est utilisé comme source de carbone et d'azote pour la culture d'Aspergillus. 7. Procédé selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce que la culture d'Asper- gillus est effectuée dans un milieu contenant outre une source de carbone et une source d'azote, des substances inorganiqueschoisiesparmi des sels minéraux favorisant la croissance des moisissures. 8. Procédé selon l'une des revendications pré- cédentes, caractérisé en ce que la culture d'Aspergillus est effectuée dans un milieu contenant des sels minéraux choisis notamment parmi des sulfate de magnésium, sulfate de fer, sulfate de cuivre, sulfate de manganèse, chlorure de calcium, molybdate de sodium. 9. Procédé selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce que la culture d'Aspergillus est effectuée dans un milieu contenant en outre des vita- mines favorisant la croissance des moisissures Asper- gillus. 10. Procédé selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce que la culture d'Aspergillus est effectuée dans un milieu contenant des vitamines choisies notamment parmi: l'acide folique, la biotine, la choline, la nicotinamide, la panthothénate de calcium, le pyri- doxal, la thiamine, la riboflavine. 11. Procédé selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce que la température de culture est comprise entre 28 C et 45 C et de préfé- rence 37 C et 44 C. 12. Procédé selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce que le pH du milieu de culture est compris entre 6 et 8. 13. Procédé selon l'une des revendications précédentes, caractérisé en ce que la culture est effec- tuée en milieu liquide ou solide, mais de préférence liquide. 14. Procédé selon l'une des revendications précédentes, comportant l'extraction de l'enzyme à par- tir du mycélium Aspergillus obtenu en milieu liquide ou solide ou à partir de la phase surnageante des cul- tures et sa purification, caractérisé en ce que lorsque la solution enzymatique extraite contient de la B- glucuronidase complexée avec de l'acide 18 e-glycyrrhé- tinique, ladite solution est additionnée d'urée disso- ciant le complexe, puis les deux produits sont séparés après élimination de l'urée. 15. Nouvelle enzyme du type e-glucuronidase, caractérisée en ce qu'elle est obtenue par le procédé selon l'une des revendications précédentes. 16. Enzyme B-glucuronidase selon la revendi- cation précédente, caractérisée en ce que, en phase aqueuse, elle possède un maximum d'activité entre 40 C et 50 C,de préférence 45 C et un pH entre 5 et 7, de préférence 6. 17. Procédé d'hydrolyse d'une solution de glycyrrhizine ou d'extraits végétaux en contenant,et contenant ou non jusqu'à 20 % en volume d'alcool éthy- lique, caractérisé en ce qu'on ajoute à la solution de la 0-glucuronidase, selon l'une des revendications pré- cédentes. 18. Procédé d'hydrolyse selon ia revendica- tion précédente, caractérisé en ce qu'on opère à pH entre 4,5 et 6,5, de préférence 5,5. 19. Procédé selon les revendications 17 et 18, caractérisé en ce qu'on opère à température entre et 55 C, de préférence 40 C. 20. Procédi de production d'acide 18 e-gly- cyrrhétinique, caractérisé en ce qu'on hydrolyse de la glycyrrhizine ou un extrait végétal en contenant, selon le procédé d'une des revendications 17 à 19. 21. Extrait de réglisse contenant ou non de l'alcool éthylique, caractérisé en ce qu'il présente une teneur réduite ou nulle en glycyrrhizine et dépour- vue d'acide 18 B glycyrrhétinique. 22. Extrait de réglisse selon la revendication précédente, caractérisé en ce qu'il conserve en outre l'intégralité des autres constituants de la réglisse. 23. Extrait de réglisse contenant ou non de l'alcool éthylique selon les revendications2l et22, caractérisé en ce que la teneur réduite en glycyrrhyzine est obtenue par l'hydrolyse de la glycyrrhyzine selon. l'une des revendications 17 à 19 et l'élimination de l'acide 18 B glycyrrhétinique formé.