Brevet FR2591227A1 — publié le 19870612

Peptides capables d'inhiber les interactions entre les virus LAV et les lvmDhocvtes T4. Produits qui en sont dé- rivés et leurs applications L'invention concerne des peptides ayant la capa- cité d'inhiber l'interaction du virus tenu pour respon- sable du SIDA avec les récepteurs T4 portés par les lym- phocytes T4. De tels virus ont été isolés par plusieurs équi- pes. Ils ont été désignés sous des abréviations diverses: LAV, HTLV-III, ARV2, etc.. Ces virus, dénommés ci-après sous l'abréviation la plus générale LAV, possèdent en effet un tropisme spécifique pour les lymphocytes T4. L'accès du virus aux lymphocytes T4 peut cependant être bloqué in vitro. lorsque ces derniers ont au préalable été incubés en présence d'anticorps monoclonaux (par exemple ceux commercialisés par la firme ORTHO sous la désignation OKT4) qui bloquent les récepteurs T4 de ces lymphocytes. C'est par référence à la capacité de ces anticorps mono- clonaux de bloquer ces sites T4, qu'il sera fait plus par- tlculièrement référence dans ce qui suit, à l'affinité des virus LAV pour les récepteurs T4 des lymphocytes T4. L'invention concerne également les applications du SIDA, en particulier de diagnostic, de thérapeutique et de prévention, auxquelles ces peptides peuvent donner lieu ainsi que les produits qui peuvent en être dérivés, que ce soit chimiquement (par exemple production d'antigènes syn- thétiques) ou par des méthodes immunologiques (par exemple production d'anticorps plus particulièrement dirigés con- tre ces peptides ou les produits dérivés). L'invention découle de l'hypothèse initiale faite par les inventeurs que l'infection des lymphocytes T4 par les virus LAV et le pouvoir pathogène de ces derniers te- naient à leur capacité d'interférer avec les antigènes régulant les capacités de reconnaissance par ces lympho- cytes de cellules porteuses d'antigènes viraux ou autres, lorsque ces antigènes leur sont présentés par les macro- phages, et ce par l'intermédiaire des récepteurs lympho- cytaires appropriés. Parmi ces antigènes, on mentionnera plus particulièrement ceux qui sont constitués par des complexes majeurs d'auto-histocompatibilité, connus sous l'expression anglaise self major histocompatibility com- plexes" et l'abréviation correspondante MHC, qui sera sou- vent utilisée dans ce qui suit. Les antigènes codés par le MHC sont appelés HLA chez l'homme. Les fonctions des divers types de lymphocytes T4 ou T8 impliquent des interactions avec les molécules co- dees par le système MHC de classe II pour les T4 et de classe I pour les T8. Leurs interactions respectives paraissent médiées par des molécules auxiliaires, parmi lesquelles des anti- gènes de différentiation T-cellulaires (notamment anti- gènes T4 et T8) et des molécules qui ont été décrites comme facteurs potentiels d'adhésion aux cellules. Pour plus de détails, on peut se reporter aux publications de (11), (12) et (13) identifiées à la fin de la présente description. Les recherches qui ont abouti à la présente inven- tion ont été fondées sur la recherche de séquences pepti- diques qui pourraient être tenues pour responsables des capacités d'adhésion mutuelle, d'une part, des lymphocytes T4 et, d'autre part, soit des antigènes MHC de classe II qui sont susceptibles de les reconnaître, soit des virus LAV, dont on présupposaitqu'ils pourraient "mimer" l'ac- tion desdits antigènes vis-à-vis desdits lymphocytes. Ces hypothèses ayant été posées, les inventeurs ont mis en évidence l'existence de séquences peptidiques communes aux chaines a de nombreux antigènes MHC de classe I, aux chaines 0 des antigènes de classe II et à une protéine codable par l'une des régions de lecture ouverte que l'on retrouve dans les génomes des différentes espèces de souches LAV qui ont été isolées. La mise en évidence de cette séquence commune, consistant en une séquence tétrapeptidique Arg-Phe-Asp-ser est d'autant plus re- marquable qu'elle se trouve dans ela seule région d'houo- logie connue à ce jour dans nombres des antigànes des classes I et II dont les séquences polypeptidiques partielles ou totales ont été analysées {18) et (19). Dans ce qui suit, on fera souvent appel à la no- menclature officielle relative aux désignations des ami- noacides naturels par une lettre unique, nomenclature que l'on rappelle ci-dessous. M méthionine L leucine I isoleucine V valine F phénylalanine S sérine P proline T thréonine A alanine Y tyrosine H histidine Q glutamine N asparagine K lysine D acide aspartique E acide glutaminique C cystéine W tryptophane R arginine G glycine En conséquence la séquence tétrapeptidique Arg- Phe-Ser-Asp est désignée dans la nomenclature susdite par RFDS. Les séquences tétrapeptidiques codables par le génome de LAV sont corrélables à une phase de lecture ouverte présente dans la partie d'extrémité 3' qui che- vauche la "région de répétition longue' (de l'anglais "long terminal repeat") dans la région U3 du génome (20). Il a déjà été suggéré que parmi les protéines codées par la phase de lecture ouverte de la région d'extrémité 3', il pouvait y en avoir une qui soit, consisterait en un régulateur de transcription (21), soit interviendrait dans la cytotoxicité à l'égard des cellules T (20), bien que ces protéines n'aient guère encore été détectées, d'o l'expression protéine "codable' qui a été utilisée plus haut. Une protéine F (p27) a été mise en évidence par Allan et al dans Science, 15 novembre 1985, 230. p. 813. Cette protéine F contient la séquence RFDS. Plus particulièrement encore, on observe un dipep- tide commun EL situé dans la même région d'homologie des antigènes de classe II et dans la séquence peptidique co- dable concernée des virus LAV, et à la même distance (9 résidus aminoacide les séparent) de la séquence tétrapep- tidique précédente du côté de l'extrémité C-terminale de celle-ci, tant dans les antigènes de classe II que dans lesdites séquences codables du génome de LAV. Ce dipeptide est inexistant dans les régions d'homologie correspon- dantes des antigènes de classe I. De même, a été observée, du côté de l'extrémité. N- terminale du tétrapeptide une séquence dipeptidique (RE) commune entre la susdite région d'homologie des antigènes de classe tI et le polypeptide codable correspondant du génome des virus LAV, si ce n'est que dans la susdite ré- gion d'homologie, cette séquence dipeptidique est séparée de la séquence RFDS par 3 résidus aminoacide et dans le polypeptide codable du virus par 4 résidus aminoacide. Une séquence dipeptidique SL est également présente. Elle est séparée de RFDS par 13 acides aminés. Cette séquence pour- rait jouer un rôle dans la fixation du virus LAV sur la protéine T4. Les résultats des observations qui ont été faites résultent du tableau à la fin de cette description, dans lequel ont été rapportées les parties des séquences pepti- diques en cause, contenues dans les polypeptides initiale- ment étudiés ou séquences et appartenant aux antigènes des classes I et II décrites dans les publications (19), (26), (27), (28), (29), (30) et (31) ou codables par des régions de lecture ouverte des ADNs correspondants de différents types de virus LAV (20), (21), (22) et (23) dans les- quelles les séquences peptidiques communes ont été amenés en regard mutuel. Dans la partie gauche du tableau sont indiqués les antigènes dont les séquences peptidiques montrées sont re- diquées. Les séquences peptidiques communes sont enca- drées. Ces observations sont à la base de l'invention, laquelle a, à son tour, confirmé la validité des hypo- thèses initialement posées. La synthèse de peptides con- tenant de telles séquences a confirmé la validité de l'hy- pothèse initialement faite. Des peptides contenant la sé- quence RFDS se sont révélés capables d'adhérer aux lym- phocytes T4 et à prévenir l'adhésion du virus LAV sur les lymphocytes ainsi modifiés. Ces peptides se sont ainsi ré- vélés comme constituant l'un des déterminants intervenant dans la reconnaissance mutuelle des lymphocytes et soit des susdits antigènes, soit des virus LAV, d'o l'expres- sion 'peptide adhésiotope" qui sera utilisée dans ce qui suit. A l'instar de ce qui a été observé dans d'autres systèmes qui ont été décrits, par exemple celui qui a conduit à la détermination du site de reconnaissance de nombreuses cellules eucaryotes par la fibronectine (1), (2) et (3), site qui s'est trouvé être localisé dans une séquence RGDS, on a constaté que dans le cas de l'inven- tion, le peptide RFDS pouvait être remplacé par un peptide ayant une séquence inversée ("forme miroir"), c'est-à-dire le peptide SDFR. Dans la mesure o le site RFDS est porté par le virus LAV ou par les antigènes MHC spécifiques des lympho- cytes T4 (ou d'autres lymphocytes, tels que les lympho- cytes T8), il en découlait aussi la possibilité que des peptides contenant la séquence présumée contenue dans ceux des sites portés par les lymphocytes eux-mêmes et qui interviennent dans la reconnaissance mutuelle susdite, pourraient jouer le même rôle. L'invention devait ainsi conduire aux peptides contenant la séquence RADS ou SDAR, en raison de leur configuration spatiale et des charges portées par certains de leurs résidus aminoacide (charges complémentaires de celles des résidus chargés de RFDS ou SDFR). Les conditions qui précèdent peuvent être illus- trées par le schéma suivant: MHC..... R F D S....> + - - + L'invention concerne donc plus particulièrement tout peptide contenant au moins une séquence tétrapepti- dique choisie parmi RFDS, SDFR, RADS qui constitue un site présent dans la molécule T, ou SDAR, ce peptide présentant une configuration telle que la séquence tétrapeptidique soit exposée dans des conditions lui permettant d'inter- agir avec un récepteur cellulaire, tenu de conserver ses propriétés d'adhésiotope. D'une façon générale, les peptides selon l'in- vention peuvent être choisis parmi ceux qui sont repré- sentés par les formules générales: X - RFDS Ez X 5 D F R Z X SDA Z X R A D S Z X SDA i S dans lesquelles X est un atome d hroçne ou un groupe peptidique avec une extrémité a-ternnaie t Z est un groupe OH ou un peptide alya-'2 une e-trée-ité C-tz2inale, ces peptides X et Z ne c ntzevenant pasD lorsqu'ils sont eux-mêmes constitués par des sqeces petidiques, - la nécessité rappelée plus haut d'an-oriser Iesposition de ia séquence tétrapeptidique. Des peptides préférés selon 1' nvention sont cons- titués par les tétrapeptides eux-mêmes. Des peptides plus actifs sont ceux qui contiennent dans une même structure l'un des tétrapeptides sus-indiqués. Des peptides intermé- diaires préférés sont ceux qui sont constitués par des acides aminés n'influençant pas la morphologie d'ensemble du peptide total, par exemple une chaîne comprenant de 2 à 10 résidus alanine. D'une façon générale, le choix des groupes pepti- diques pouvant être associés aux séquences tétrapeptidi- ques selon l'invention (o dont l'utilisation devrait être évitée) peut être guidé par l'utilisation de programmes permettant la modélisation des configurations des polypep- tides susceptibles d'être obtenus au terme de l'assemblage de séries prédéterminées d'aminoacides. De tels programmes ont notamment été décrits par (14), (15) et (16). D'autres peptides préférés conformes à l'invention sont ceux qui peuvent être représentés par les formules suivantes (dans lesquelles chaque tiret "-' représente un résidu d'aminoacide): X RF D S -- EL - Z X - RE ---- LD l- Z X- RE ---- R F D 5 - EL- Z dans lesquelles X et Z ont les significations sus-indi- quées. Des peptides particulièrement préférés contiennent des séquences polypeptidiques choisies parmi REVLEWRFDSRLAFHHVAREL REVLEWRFDSKLAFHHVAREL REVLEWRFDSEKLAFHHMAR-L respectivement issues des séquences codables contenues dans les genomes de LAVia, HTLV III, ARV2 et LV rappelées dans le tableau. Les éléments de séquence soulignés cor- respondent aux séquences davantage spécifiques qui ont été définies plus haut. D'une façon générale, le nombre total de résidus d'acides aminés contenus dans les séquences peptidiques selon l'invention n'est pas déterminant. Il sera essen- tiellement limité par des raisons d'ordre pratique, pour ce qui est de la synthèse chimique. Normalement le nombre total d'acides aminés ne dépassera pas 50. Avantageuse- ment, il est inférieur à 30, voire même à 20. La capacité des peptides adhésiotopes selon l'in- vention d'inhiber l'adhésion d'un virus LAV à des lympho- cytes T4 peut être appréciée, notamment par la diminution, voire la suppression de la fixation du LAV au récepteur membranaire des lymphocytes T4 après que soit les lympho- cytes (dans le cas de peptides contenant RFDS ou SDFR), soit les virus (dans le cas des peptides contenant SDAR ou RADS) aient été préincubés avec ces peptides. A cet effet on peut utiliser le virus LAV marqué, par exemple couplé à la fluorescéine isothiocyanate (LAV FITC). La propriété adhésiotope du peptide étudié s'apprécie alors par la réduction ou même la disparition totale de lymphocytes retenant le virus marqué, après séparation éventuelle de l'excédent de virus marqué non fixé sur les lymphocytes. On peut naturellement avoir recours à toute autre méthode appropriée pour la mesure du pouvoir adhésiotope des peptides à l'étude. Il va naturellement de soi que certains des amino- acides, dans les structures envisagées peuvent être rem- placées par d'autres. Eventuellement dans la séquence RFDS, le résidu F peut être remplacé par un résidu Y. D'une façon générale, on peut avoir recours à toute subs- titution d'aminoacide par un autre aminoacide isostérique. Les peptides selon l'invention sont utilisables comme réactifs, par exemple pour détecter dans un fluide biologique, par exemple le sérum d'un malade, des anti- corps dirigés contre la région du génome du virus LAV qui contient la séquence RFDS. Il a de plus été constaté que cette séquence RFDS constitue apparemment le site de reconnaissance utilisable par d'autres types de virus à l'égard des cellules qu'ils sont capables d'infecter. Tel est par exemple le cas du rhinovirus HRV14, dont la protéine VP1 contient également la séquence RFDS. La même généralisation peut se faire au niveau d'autres virus, par exemple le virus d'Epstein- Barr, dont une glycoprotéine contient l'adhésiotope RADS. L'invention concerne plus particulièrement ces peptides en tant qu'ils peuvent être utilisés pour la fa- brication d'anticorps monoclonaux ou polyclonaux suscep- tibles de les reconnaître spécifiquement. Ces peptides peuvent être modifiés par l'homme du métier pour qu'ils puissent se fixer sur le site de fixation du LAV sur des cellules T4 sans interférer avec l'activité de la protéine T4 avec le système HLA. Ces peptides peuvent être utilisés dans des kits de diagnostic pour la recherche d'anticorps LAV dans le sérum des malades. Ils peuvent aussi être uti- lisés pour la détection de protéines virales dans le sérum des malades et aussi à des fins thérapeutiques par admi- nistration à des malades dans le but d'empêcher la dissé- mination de l'infection à de nouvelles cellules ou & des personnes non encore atteintes et ce à des fins préven- tives, pour empêcher l'infection. L'invention concerne encore les régions intermé- diaires entre les sites RFDS et EL, d'une part, et RE, d'autre part, dans les génomes des différentes formes de virus LAV qui ont été isolés. Ces régions sont caractérisées par un grand degré de conservation. Il s'agit plus particulièrement des ré- gions VLEW RLAFHHVAR KLAFHHVAR RLAFHHMAR. L'invention concerne aussi l'application de ces derniers types de peptides, aux mêmes fins que celles qui ont été indiquées pour les précédents peptides. Ils peu- vent le cas échéant être utilisés directement pour sa fa- brication d'anticorps monoclonaux ou polyclonaux, ceux-ci étant alors aptes à se fixer sur les protéines T4, in vitro ou in vivo sans interférer avec l'activité de la protéine T4 avec le système HLA. L'invention concerne encore les compositions immu- nogènes qui peuvent être préparées en mettant en jeu les peptides selon l'invention, le cas échéant amenés sous les formes appropriées à la manifestation in vivo de cette immunogénicité, d'une part, et la production d'anticorps, de préférence monoclonaux, plus spécifiquement dirigés vers les sites spécifiques de ces peptides. Par "sites spécifiques", on entend plus particulièrement ceux qui ont été indiqués dans ce qui précède, en l'occurrence tant les sites RFDS, SDFR, SDAR, RADS, EL ou, d'ailleurs également, LE, RE ou ER (EL et ER faisant également partie de l'in- vention), que les sites intermédiaires entre ces groupes peptidiques et plus spécifiquement les peptides intermé- diaires entre RFDS et EL, d'une part, RFDS et RE, d'autre part, dans les génomes des virus LAV concernés. Les peptides selon l'invention peuvent être prépa- rés par les techniques classiques, dans le domaine de la synthèse des peptides. Cette synthèse peut être réalisée en solution homogène ou en phase solide. Par exemple on aura recours à la technique de syn- thèse en solution homogène décrite par HOUBENWEYL dans l'ouvrage intitulé 'Methode der Organischen Chemiec (1é- thode de la chimie organique) édité par E. WUNSCH, vol. 15-I et II. THIEME, Stuttgart 1974. Cette méthode de synthèse consiste & condenser successivement deux & deux les aminoacyles successifs dans l'ordre requis, ou à condenser des aminoacyles et des fragments préalablement formés et contenant déjà plusieurs résidus aminoacyles dans l'ordre approprié, ou encore plu- sieurs fragments préalablement ainsi préparés, étant en- tendu que l'on aura eu soin de protéger au préalable tou- tes les fonctions réactives portées par ces aminoacyles ou fragments, à l'exception des fonctions amine de l'un et carboxyle de l'autre ou vice versa, qui doivent normale- ment intervenir dans la formation des liaisons peptidi- ques, notamment apres activation de la fonction carboxyle, selon les méthodes bien connues dans la synthèse des pep- tides. En variante, on pourra avoir recours à des réac- tions de couplage mettant en jeu des réactifs de couplage classique, du type carbodiimide, tels que par exemple la 1-éthyl-3-(3-diméthylaminopropyl)-carbodiimide. Lorque l'aminoacyle mis en oeuvre possède une fonction acide supplémentaire (notamment dans le cas de l'acide gluta- mique), ces fonctions seront par exemple protégées par des groupes t-butylester. Dans le cas de la synthèse progressive, acide aminé par acide aminé, la synthèse débute de préférence par la condensation de l'aminoacide C-terminal avec l'ami- noacide qui correspond à l'aminoacyle voisin dans la séquence désirée et ainsi de suite, de proche en proche, jusqu'à l'acide aminé N-terminal. Selon une autre tech- nique préférée de l'invention, on a recours à celle décrite par R.D. MERRIFIELD dans l'article intitulé "Solid phase peptide synthesis" (J. Am. Chem. Soc., 45, 2149- 2154). Pour fabriquer une chaîne peptidique selon le pro- cédé de MERRIFIELD, on a recours à une résine polymère très poreuse, sur laquelle on fixe le premier aminoacide C-terminal de la chaîne. Cet aminoacide est fixé sur la résine par l'intermédiaire de son groupe carboxylique et sa fonction amine est protégée, par exemple par le groupe t-butyloxycarbonyle. Lorsque le premier aminoacide C-terminal est ainsi fixé sur la résine, on enlève le groupe protecteur de la fonction amine en lavant la résine avec un acide. Dans le cas o le groupe protecteur de la fonction amine est le groupe t-butyloxycarbonyle, il peut être éli- miné par traitement-de la résine à l'aided'acide trifluo- roacétique. On couple ensuite le deuxième aminoacide qui four- nit le second aminoacyle de la séquence recherchée, à par- * tir du résidu aminoacyle C-terminal sur la fonction amine déprotégée du premier aminoacide C-terminal fixé sur la chaîne. De préférence, la fonction carboxyle de ce deu- xième aminoacide est activée, par exemple par la dicyclo- hexylcarbodiimide, et la fonction amine est protégée, par exemple par le t-butyloxycarbonyle. On obtient ainsi la première partie de la chaîne peptidique recherchée, qui comporte deux aminoacides, et dont la fonction amine terminale est protégée. Comme pré- cédemment, on déprotège la fonction amine et on peut en- suite procéder à la fixation du troisième aminoacyle, dans les conditions analogues à celles de l'addition du deu- xième aminoacide C-terminal. On fixe ainsi, les uns après les autres, les acides aminés qui vont constituer la chaîne peptidique sur le groupe amine chaque fois déprotégé au préalable de la portion de la chaîne peptidique déjà formée, et qui est rattachée à la résine. Lorsque la totalité de la chaîne peptidique dési- rée est formée, on élimine les groupes protecteurs des différents aminoacides constituant la chaîne peptidique et on détache le peptide de la résine par exemple à l'aide d'acide fluorhydrique. L'invention concerne également les oligomères hy- drosolubles des peptides monomères sus-indiqués. L'oligo- mérisation peut provoquer un accroissement de l'immunogé- nicité des peptides monomères selon l'invention. Sans qu'une telle indication chiffrée puisse être considérée comme limitative, on mentionnera néanmoins que ces oligo- mères peuvent éventuellement contenir de 2 à 25 unités monomères. Elle concerne plus particulièrement ceux des oli- gomères dans lesquels les motifs adhésiotopes sont reliés les uns aux autres par des chainons peptidiques intermé- diaires n'interférant pas avec leurs possibilités d'expo- sition. Ces chaînons sont par exemple constitués par des dipeptides Ala-Ala. On peut avoir recours, pour réaliser l'oligoméri- sation, à toute technique de polymérisation couramment utilisée dans le domaine des peptides, cette polymérisa- tion éant conduite jusqu'à l'obtention d'un oligomère ou polymère ontenant le nombre de motifs monomères requis pour l'acquisition de l'immunogénicité désirée. Une méthode préférée de l'oligomérisation ou de polymérisation du monomère consiste dans la réaction de celui-ci avec un agent de réticulation tel que le gluta- raldéhyde. On peut également avoir recours à d'autres méthodes d'oligomérisation ou de couplage, par exemple à celle mettant en jeu des couplages successifs d'unités monomères, par l'intermédiaire de leurs fonctions termi- nales carboxyle et amine en présence d'agents de couplage homo- ou hétérobifonctionnels. On peut également, pour la production de molécules comportant un ou plusieurs motifs nonapeptidiques tels que définis cidessus, avoir recours à des techniques du génie génétique mettant en oeuvre des micro-organismes transfor- més par un acide nucléique déterminé comprenant des séquen- ces nucléotidiques appropriées correspondantes. L'invention concerne encore les conjugués obtenus par couplage covalent des peptides selon l'invention (ou des susdits oligomères) à des molécules porteuses (natu- relles ou synthétiques) physiologiquement acceptables-et non toxiques, par l'intermédiaire de groupements réactifs complémentaires respectivement portés par la molécule por- teuse et le peptide. Des exemples de groupements appro- priés sont illustrés dans ce qui suit: A titre d'exemples de molécules porteuses ou sup- ports macromoléculaires entrant dans la constitution dès conjugués selon l'invention, on mentionnera des protéines naturelles, telles que l'anatoxine tétanique, l'ovalbu- mine, des sérums albumines, des hémocyanines, etc.. A titre de supports macromoléculaires synthéti- ques, on mentionnera par exemple des polylysines ou des poly(D-L-alanine)poly(L-lysine). La littérature mentionne d'autres types de sup- ports macromoléculaires susceptibles d'être utilisés, lesquels présentent en général un poids moléculaire su- périeur à 20.000. Pour synthétiser les conjugués selon l'invention, on peut avoir recours à des procédés connus en soi, tels que celui décrit par FRANTZ et ROBERTSON dans *Infect. and Immunity", 33, 193-198 (1981), ou celui décrit dans 2 591227 "Applied and Environmental Microbiology, octobre 1981, vol. 42, n' 4, 611614 par P.E. KAUFF-3Ua en utilisant le peptide et la molécule porteuse appropriée. Dans la pratique, on utilisera avantageusement comme agents de couplage les composés suivants, cités à titre non limitatif: aldéhyde glutarique, chloroformiate d 'ethyle, carbodiimides hyerosolubles ( - '3-dié- thylamino-propyl) ca'bodiinmide, Cl), diisocyanates, Dis- diazobenzidine, di- et trichloro-s-triazines bromures de cyanogène, benzoquinone, ainsi que les agents de couplage mentionnés dans Scand. J. I-runol., 1978, vol. 1, p.7-23 (AVRAMEAS, TERNYNCK, GUESDO 1). On peut avoir recours à tout procédé de couplage faisant intervenir d'une part une ou plusieurs fonctions réactives du peptide et d'autre part, une ouo plusieurs fonctions réactives des molécules supports. Avantageuse- ment, il s'agit des fonctions carbozyle et amine, les- quelles peuvent donner lieu à une réaction de couplage en présence d'un agent de couplage du genre de ceux utilisés dans la synthèse des protéines, par exemple le 1-éthyl-3- (3-diméthylaminopropvl)-carbodiimide, le N-hydroxybenzotriazole, etc.. On peut encore avoir recours à la glutaraldéhyde, notamment lorqu'il s'agitde relier entre eux des groupes aminés respectivement portés par le peptide et la molécule support. Des caractéristiques supplémentaires de l'inven- tion apparaîtront encore au cours de la description qui suit des conditions dans lesquelles des peptides préférés de l'invention ont été obtenus. EXEMPLE 1: Svnthèse du Ara-Phe-Asp-Ser-Ala-Ala-Arq-Phe-Asp-Ser Pour préparer cepeptide, on a recours à la synthèse peptidique mentionnée ci-dessus et on procède comme suit ou de façon équivalente. Les abréviations utilisées dans le cadre de cette synthèse ont la signification suivante: BOC: -butyloxycarbonyle Asp:acide aspartique Ala:alanine Arg:arginine Ser:serine Phe:phénylalanine. On utilise comme aminoacides des N-alpha-amino- acides protégés uniquement avec le groupe t-butyloxy- carbonyle (BOC). Les groupes fonctionnels latéraux sont protégés comme suit: Arg est protégé par le groupe tosyle. Asp est protégé par le groupe cyclohexyle. Ser est protégé par le groupe benzyle. On distille CH2Cl2 à partir de Na2CO3 anhydre avant utilisation. Il est avantageux d'utiliser un support de résine constitué par un copolymère chlorométhylé de styrène et de divinylbenzène à 1 % (commercialisé par les Laboratoires BIORAD). La N-alpha-t-butyloxycarbonyl-O-benzyl-sérine est de préférence estérifiée sous forme de son sel de césium (GISIN B.F. (1973) Helv. Chim. Acta 56, 1476). La synthèse est effectuée dans un synthétiseur automatique du type de celui commercialisé par BECKMAN sous la désignation 990 B. Chacun des acides aminés entrant dans la consti- tution du peptide selon l'invention est fixé à la chaîne peptidique déjà formée comme il est indiqué ci-après. a) On lave trois fois la résine pendant environ 3 minutes avec du chlorure de méthylène pour la mettre en suspension. b) On lave ensuite une fois pendant environ trois minutes avec de l'acide trifluoroacétique à 40 % pour imprégner la résine. c) On relave une fois pendant environ 30 minutes avec de l'acide trifluoroacétique pour déprotéger le groupe N-terminal de la chaîne peptidique déjà formée. d) On lave ensuite deux fois pendant environ 3 minutes vec du chlorure de méthylène pour éliminer l'acide trifluoroacétique. e) Puis on lave deux fois pendant environ 3 mi- nutes avec de l'alcool isopropylique pour éliminer le chlorure de méthylène. f) Puis on réimprègne le milieu en lavant 4 fois pendant 3 minutes avec du chlorure de méthylène. g) On lave trois fois pendant environ 3 minutes avec de la diisopropyléthylamine pour neutraliser la fonction amine, qui se trouvait salifiée sous forme de son sel avec l'acide trifluoroacétique. h) On lave quatre fois pendant environ 3 minutes avec du chlorure de méthylène pour chasser la diisopropy- lamine en excès. i) On ajoute l'acide aminé à fixer sur la chaîne peptidique déjà formée, comme indiqué ci-dessous. j) On lave ensuite trois fois pendant environ 3 minutes avec du chlorure de méthylène. k) Puis on chasse le chlorure de méthylène en lavant deux fois pendant environ 3 minutes avec de l'alcool isopropylique. 1) On lave enfin trois fois pendant environ 3 mi- nutes avec du chlorure de méthylène,.pour remettre le mi- lieu réactionnel dans son solvant. En ce qui concerne la fixation de chacun des aci- des aminés à une chaîne peptidique déjà formée, on a recours à un acide aminé (en excès par rapport à la chaîne peptidique déjà formée, cet excès correspondant à environ trois fois la charge de la chaine peptidique) dont la fonction amine est protégée par le groupe t-butyloxycarbonyle et dont la fonction acide est activée par la dicyclohexylcarbodiimide, l'hydroxybenzotriazole ensuite additionné afin de minimiser les réactions secondaires (ARENDT A., KOLODZIEJZKYK A.M. (1978) Tetrahedron Lett 40, 3867), (MOJSOV S., MITCHELL A. R. (1980) J. Org. Chem. 45, 555). Après chaque étape d'addition d'un acide aminé, on détermine la quantité d'acide aminé libre qui n'a pas été fixée sur la chaine peptidique, par le test à la ninhy- drine (KAISER E., COLESCOTT R.L. et al. (1976) Anal. Biochem. 34, 595). A la fin de la synthèse, on élimine tous les grou- pes protecteurs fixés sur le peptide porté par la résine. On détache le peptide de la résine à l'aide d'acide fluo- rhydrique anhydre à raison de 10 ml d'HF anhydre par gramme de résine, en présence de cresol (1 g par gramme de résine) à la température d'environ O'C pendant environ 60 minutes. Après évaporation de l'acide fluorhydrique, le mé- lange réactionnel est lavé à l'éther et le peptide est sé- paré de la résine par extraction à l'aide d'acide acétique à 5 %. Les extraits sont dilués à l'eau et lyophilisés. Le peptide brut obtenu est soluble dans l'eau. Il est purifié par chromatographie sur une colonne du type de celle commercialisée sous le nom GF 05 (IBF) en utilisant comme phase mobile de l'acide acétique à 5 %. On mesure une absorption à 254 nm. Les différentes fractions du pic principal sont examinées sur le plan de leur homogénéité et rassemblées, puis repurifiées par HPLC (abréviation de l'expression anglaise "High Pressure Liquid Chromatogra- phy" ou 'Chromatographie en Phase Liquide Haute Pression), chargées en le matériau connu sous la marque PARTISIL ODS2 (Whatman, magnum 9), au moyen d'un gradient de O à 70 % d'acétonitrile en présence de 1 pour mille d'acide 259.1227 trifluoroacétique. Les fractions sont collectées et lyo- philisées avec un rendement global de 25 %. La composition en acides aminés, après hydrolyse acide totale, confirme la structure du peptide. On mesure la pureté par chromatographie liquide sous haute pression en phase inversée sur une colonne du type de celle commercialisée sous le nom p Bondapack C18 dans laquelle l'éluant est un gradient que l'on fait pas- ser en 20 minutes de la composition O % d'acétone - 100 % de tampon phosphate 0:0025 M, pH 2,5 à la composition 60 % d'acétone-40 % tampon phosphate. EXEMPLEZ: ynthèse du pept' e de me $ La synthèse est réalisée dans des conditions ana- logues à celles décrites dans ltexemple 1.- On obtient le peptide avec un zendement de 30 %. EXEMPLE 3: De la même façon, on réalise les synthèses de KLNDRADSRRSL et des polypeptides suivants SDFRAARFDS RADSAASDAR SDARAARADS. EXEMPLE 4: De la même façon, on réalise les synthèses des polypeptides dont les séquences correspondent à cellas des virus ou lymphocytes dont les désignations abrégées appa- raissent à gauche de la liste qui suit. HLA-DR2$ VRFLDRYFYNQEESVRFDSDVGEFRAVTELGRPDA LAV-F SLHGMDDPEREVLEWRFDSRLAFHHEVARELHPEYF HRV-14-VP1 SLVQLRKKLELFTYVRFDSEYTILATASQPDSANY T8 RLGDTFVLTLSDFRRENEGYYFCSAL T4 NQGSFLTKGPSKLNDRADSRRSLWDQGNFPL EBV DGNKETFHERADSFHVRTNYKIV L'efficacité des d eprties e! invention en tant qu'inhibiteurs de 'adnesion du LàV î des lymphocytes T4, est illustrée ci-apr1s pr les résulitats qui ont été obtenus avec le peptide AFDS AA nFDS. La fixation du LAV à son récepteur membranaire a été directement appréciée par l'analyse de la fixation membranaire du virus LAV couplé à la fluoresceine (LAV FITC). En bref, 106 cellules sont incubées avec 6 micro- grammes de LAV FITC, lavées p.uis exam.inéees au microscope & fluorescence. Par cette technique, on d%étecte habituel- lement environ 10 % de cellules marquées dans une popula- tion de celluiles Tn4 + p-rf-ies, Putr éalue capetit6 du peptide synthtiquz ô -::1o%, .c Go b lules T4 ont été pSA ú -. cú -t11 T riables du peptide, penQn-% 30 m.nu'e Lr OY aveg de l'excès du peptide non fixe, un marquage classique par le LAV FITC. Par cette technique, on a pu observer que le peptide étudié inhibait complètement la fixation du LAV FITC & son récepteur jusqu'à des concentrations aussi basses que 1 microgramme par millilitre. Comme il va de soi et comme il résulte d'ailleurs déjà de ce qui précède, l'invention ne se limite nullement à ceux de ses modes d'application et de réalisation qui ont été plus spécialement envisages; elle en embrasse au contraire toutes les variantes. Il est entendu que toute la littérature technique à laquelle renvoie la bibliographie qui suit doit être considérée come faisant partie de la présente description, en ce qu'elle serait nécessaire à l'illustration des points à partir desquels la présente invention a été dé- gagée. O * O CI. C. CQ CL a. o. a. a r r r L w zCr w o o. m m Q. Ci. o. CL CL CrycoY Cr C.. CL il. X VI n VI VI V n Ln VI Vn O* a. afi. ox CL m o o a. o. m o.o.o o. o. ce o.o.o o. CL o. o. a. LLa La lai LaJ La La Ct:"cx: mm x m m CLi c. i. Co. O. O. o C X ZX X Zc cx C L C) La LaL a a -t-t- 't Gt Ct C- t o2. LU Cr O. -t -t - - U- - s- - -- o - - - - La La L >- >- >- > -: >- >- La L > La La La > - p La > La La La La La eJ S>> W e eeae eee C oC o L 8, r I J J J J _ _ J -J IJ làJ J LUJ a.L W l&J I L wl &Ai.J - bs >- F- 1-- -- - >- La L L. La, a L L L aeeIl ee- Ci o. oe ce = mz = = S = = La La L4. tl- -J -- "C -JJ- - Ln Ln VI VIv VI n VIl I VIVI V) VI VI VI VI VI VIVI V V v V VI I VI VI VII VI I VI VI I I J La LL IL. Là U a L.L L Ila. L la. S. La L1 W- l-. 1. La L L-L L1 la.- L-La LL ta-. t u' LL-E3j-, L1 La La I. t.-JLa L. u u = cy- w m Cr. Cr LK mff cx c% cx O: m, cx lx cz Cr M úa: cc Cr Cr iom ct Le 0. oc Or L X Cr cx Cr x cx > >- >:'. >- -- a > > La- La- La La- U. LLa La La CYCr7oCo r 'J -J J Cr bF- F- IF- F- F- F- F-- F- r, cm. O C O O C O O (O O - -- -t- VI Ft - t L- L- L Là- La LA- L- L_ I_. ce o o eo = o z =o O * o o. CL o. o O. CL o i. o.o r4- F- t- F- t- F- F- zl- La CT La La La cyw UJC - -- GOOC; - a"o a. z a o o :- z- z' z- z- z- > z _- - -- z- z -'.' > Là La >- La La La Là- oC. co ox o - o o. qr - - Cu CD r4 - rCM- Q C 9" j "19 r, *' *ex' o - v r "-J _ > _- >" > >-La J W La Wa La La 1 La La La 1 a- La La La L L La La L L La a1 La L La Cr CrQCL CM. lx mce Cr CC CJO' I Z''_Z Z. _ Z L L La S-- >- vl V: - >- V) a a M -J J -J 1- z-: z z-.. - -j J >L la. -J t- cJ >- tl la t z Cr cx a: cxL: Cà CLr ", ce u: c: cX I. o. o.1 W. F F- o o. F. o.t o. o -r CO 0CT 0:-:- -- z- >-:,- - I qr. r , s.), o. ao.r o '. o. o.o.. a CL a. C.a = C> a' a m a a a C& n O O CI CD C O CD CD CI. o CD CDr -J - :>:> -JJ -J u- z- tz- Ai...j >! >- >_ Z r Z W- Wà Ui E:W La La La La La ZZ Z - Z Z >- >- z- >_ >_ >_ o. C. o. o. o. o. FJ -J >- La-.j." CL o. o o. ce o. ---z-zJ-J- Vu W ÀD 'Tl.0 -I CrS a L W W LJ H IiIIl a) CI] mI n -.I !'-I 2. .J -.J.-J CD LJW>o U oi. L o. LaJ L LJ LW CD ci CD C. c. X. O. LaO CD zr z z: -J -J -J -J -- _r- z _ _ _, ,,, _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ _ r BIBLIOGRAPHIE (1) Yamada K.M., Ann. Rev. Biochem. 52:761, 1983. (2) Boucaut J.C. et al, Nature 307:364, 1984. (3) Rovasio R.A. et al, J. Cell. Biol. 96:462, 1982. (4) Pierschbacher M.D. et al, Cell 26:259, 1981. (5) Pierschbacher M.D. et al, J. Biol. Chem. 257:9593, 1982. (6) Pierschbacher M. et al, Proc. Natl. Acad. Sci. USA, :1224, 1983. (7) Pierschbacher M.D. et al, Nature 309:30, 1984. (8) Yamada K.M. et al, J. Cell. Biol., in press, 1985. (9) Boucaut J.C. et al, J. Cell. 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(32) Mairn AR. es al, Diochemistry 20:4739, 981. 1 - Peptide choisi parmi ceux qui sont représentés par les formules générales X R- RaD c X S D F R Z X S D A R Z X R A D S Z dans lesquelles X est un atome d'hydrogène ou un groupe peptidique avec une extrémité N-terminale et Z est un groupe OH ou un peptide ayant une extrémité C-terminale, ces peptides X et Z ne contrevenant pas, lorsqu'ils sont eux-mêmes constitués par des séquences peptidiques, & la nécessité d'autoriser l'exposition de la séquence tétra- peptidique interne. 2 - Peptide selon la revendication 1, caractérisé en ce qu'il contient dans une même structure l'un des té- trapeptides sus-indiqués et le tétrapeptide "miroir" cor- respondant, les deux tétrapeptides étant connectés entre eux par un groupe peptidique intermédiaire distinct n'in- terférant pas avec la possibilité d'exposition de chacun des deux tétrapeptides. 3 - Peptide selonla revendication 2, caractérisé par une chaîne comprenant de 2 à 10 résidus alanine. 4 - Peptide selon la revendication 1, caractérisé par les formules: X - R F D S - ---- EL Z X - RE ----R F D S Z X RE ----R F D S --------- EL Z dans lesquelles chaque tiret "_- représente un résidu d'aminoacide et X et Z ont les significations sus-indi- quées. - Peptide choisi parmi: REVLEWRFDSRLAFHHVARL BRVLEWRFDSKLAFHHVARL EVLEWRFDSKLAFHHMAREL. 6 - Peptide selon l'une quelconque des revendica- tions 1 à 5, caractérisé en ce que le nombre total d'aci- des aminés qu'il contient ne dépasse pas 50, avantageu- sement est inférieur à 30, voire même à 20. 7 - Peptide choisi parmi: RFDSAASDFR SDFRAARFDS RADSAASDAR SDARAARADS. 8 - Anticorps de préférence monoclonaux, caracté- risés par leur capacité de reconnaissance spécifique de l'un des peptides selon l'une quelconque des revendica- tions 1 à 7. 9 - Procédé d'inhibition de l'adhésion de virus LAV à des lymphocytes T4 comprenant la mise en contact soit des virus, soit des lymphocytes, avec un peptide conforme à l'une quelconque des revendications 1 à 7. - Procédé pour détecter dans un fluide bio- logique, par exemple le sérum d'un malade, des anticorps dirigés contre la région du génome du virus LAV qui con- tient la séquence RFDS, qui comprend la mise en contact de ce fluide biologique avec le virus dans des conditions propres à permettre la réaction immunologique sous-tendant la détection du virus. 11 - Peptide choisi parmi l'un des suivants: VLEW RLAFHHVAR KLAFHHVAR RLAFHHMAR. 12 - Anticorps monoclonaux spécifiquement dirigés contre l'un des peptides de la revendication 11.