Brevet FR2597344A1 — publié le 19871023

- 1- 2597344 La présente invention a pour objet un perfectionnement au procédé de purification d'antigènes protéiques de bactéries appartenant au genre Bordetella, en vue de l'obtention d'un vaccin acellulaire. On sait que la culture de bactéries du genre Bordetella, par exemple Bordetella pertussis, Bordetella parapertussis et Bordetella bronchiseptica, permet l'obtention de la protéine F-HA (Filamentous Hemagglutinin); de plus la culture de B.pertussis permet également l'obtention d'une exotoxine protéique: la toxine pertussis (encore appelée LPF ou LPF-HA: Leukocytosis Promoting Factor-Hemagglutinin). Les bactéries du genre Bordetella sont des agents pathogènes connus. On sait en particulier que la bactérie Bordetella pertussis est l'agent pathogène de la coqueluche et que sa culture industrielle est utilisée dans la production de vaccins anticoquelucheux. On sait également que les antigènes toxine pertussis et F-HA sont 15 susceptibles d'entrer dans la composition d'un vaccin acellulaire anticoquelucheux. La purification de la toxine pertussis comprend généralement, une étape de purification par chromatographie d'affinité. L'élution de la toxine pertussis d'un support de chromatographie 20 d'affinité est généralement effectuée à l'aide de tampons renfermant des concentrations élevées de sels et/ou d'agents chaotropiques ou dénaturants tels que le chlorure de magnésium, l'urée, le thiocyanate de sodium ou de potassium, le chlorhydrate de guanidine, etc.. Le principe actif ainsi récupéré en présence de ces produits ne peut pas être utilisé tel quel dans 25 une préparation vaccinale. En conséquence, l'éluat contenant la toxine doit subir une étape supplémentaire ayant pour but l'élimination complète des agents chaotropiques et/ou la réduction des concentrations salines. Cette étape supplémentaire peut consister par exemple en une dialyse exhaustive ou en une filtration sur gel; voir par exemple le brevet US 4.500.639 et la 30 demande de brevet européen n 0140386. En outre, l'utilisation de ces techniques d'élution entratne généralement une insolubilisation partielle et irréversible du principe actif. La présente invention a pour objet l'utilisation d'une solution tampon particulière qui permet la purification de la toxine pertussis. L'utilisation de ce tampon particulier permet l'élution de la toxine pertussis du support de chromatographie d'affinité. L'utilisation de ce tampon permet d'éluer et donc de purifier en une seule étape la toxine pertussis avec des rendements élevés. L'utilisation de ce même tampon, additionné d'un agent tensio-actif, permet en outre la solubilisation, sans perte, de la toxine 40 pertussis et du F-HA. Ce tampon sert également de solvant dans le procédé de A - 2 - 2597344 détoxification de la toxine pertussis et permet de maintenir l'anatoxine en solution. En outre, contrairement aux tampons habituellement utilisés, le tampon particulier de l'invention est compatible avec la préparation d'un vaccin. Autrement dit, les antigènes en solution dans ce tampon peuvent être utilisés directement dans une préparation vaccinale. La présente invention a donc pour objet l'utilisation, dans la purification, la solubilisation et/ou la détoxification de la toxine pertussis et du F-HA des bactéries du genre Bordetella, d'un tampon carbonate ayant un 10 pH de 8,3 à 11,6. Un tel tampon peut être obtenu de façon classique, par exemple en réalisant une solution aqueuse d'un mélange d'un bicarbonate (hydrogénocarbonate) et d'un carbonate alcalin (le métal alcalin étant le sodium ou le potassium) ou encore par mélange en solution aqueuse d'un bicarbonate alcalin et d'un hydroxyde de métal alcalin (soude ou potasse). De préférence, le tampon carbonate a une molarité de 0,025-0,5M, et un pH de 8,3-11,6. Le tampon carbonate utilisé selon l'invention peut contenir en outre un agent tensio-actif, par exemple un agent tensio-actif non ionique tel que le Tween 80 (marque commerciale pour le polyoxyéthylène (20) Sorbitan mono 20 oléate). En règle générale, on utilise de préférence un tampon avec tensio-actif, lorsque cela est nécessaire, pour solubiliser le produit (toxine pertussis ou F-HA) présent sous la forme d'un précipité ou d'un lyophilisat. La concentration du tensio-actif dans le tampon est alors généralement 25 inférieure à 1% en poids, et le plus souvent inférieure à 0,5% en poids. Lorsqu'il s'agit d'éluer la toxine pertussis, on utilise de préférence le tampon carbonate sans tensio-actif. L'utilisation selon l'invention de tels tampons carbonate présente les avantages qui vont être décrits ci-après. Le tampon carbonate permet l'élution de la toxine pertussis d'un support de chromatographie d'affinité. Le liquide chromatographié peut être soit un surnageant de culture de bactéries du genre Bordetella, soit une fraction enrichie en toxine pertussis. On sait que l'utilisation de la toxine pertussis dans un vaccin 35 acellulaire nécessite une opération préalable de détoxification, par exemple par traitement avec le formol ou le glutaraldéhyde. La détoxification a pour but d'éliminer notamment l'effet d'induction de lymphocytose chez la souris, la sensibilisation à l'histamine, l'activité ADP-ribosyl transférase, l'effet cytopathogène sur cellules CHO (Chinese Hamster Ovary), etc.... -3- 2597344 Une telle détoxification, par exemple à l'aide de formol, conduit à une insolubilisation de la toxine qui rend difficile l'obtention d'une préparation purifiée homogène; voir par exemple le brevet US 4.455.297. L'utilisation du tampon carbonate, éventuellement additionné d'un 5 tensio-actif, permet de réaliser l'opération de détoxification en solution et de maintenir en solution l'anatoxine obtenue. Enfin, comme indiqué précédemment, la solution d'anatoxine pertussis dans le tampon carbonate peut être utilisée directement dans une préparation de vaccin acellulaire. On a découvert en outre que le tampon carbonate (éventuellement additionné d'un agent tensio-actif, par exemple non ionique, tel que le Tween ) favorise la mise en solution du F-HA. L'invention a également pour objet un procédé de purification des antigènes protéiques produits dans les milieux de culture des bactéries du 15 genre Bordetella, ce procédé étant caractérisé par le fait que l'on met en contact le surnageant de culture, ou une fraction enrichie en toxine pertussis, avec un support solide de chromatographie, capable de fixer la toxine pertussis, puis que l'on élue la toxine dudit support solide à l'aide d'un tampon carbonate ayant un pH de 8,3 à 11,6 et que, si désiré, on soumet 20 l'éluat à une opération de détoxification. Dans un mode d'exécution particulier, après avoir ajusté le pH à une valeur comprise entre 6 et 8, préférentiellement 7, le surnageant de culture, ou la fraction enrichie en toxine pertussis, est mis en contact avec une glycoprotéine douée d'affinité pour la toxine pertussis, en particulier avec 25 une asialoglycoprotéine (asialofétuine par exemple) couplée à un support chromatographique solide. La quantité de support chromatographique utilisée est fonction du volume de la solution de départ et/ou de la concentration en toxine pertussis dans la fraction à purifier. Le contact se fait par exemple à température de 2 à 30 C, en colonne. Les glycoprotéines douées d'affinité pour la toxine pertussis sont connues; on citera par exemple l'haptoglobine, la fétuine, etc... Toutefois, on effectue la chromatographie d'affinité, de préférence, sur ces protéines soumises préalablement à un traitement de désialylation, cette désialylation étant effectuée par hydrolyse acide douce, selon les méthodes connues; voir 35 par exemple SPIRO et al, J. Biol. Chem. 1974, 249, 5704-5717. Le couplage de la glycoprotéine ou de la glycoprotéine désialylée peut être effectué selon les méthodes connues. Le support peut être tout support solide classique utilisé habituellement en chromatographie d'affinité. Le support est notamment un dérivé polyosidique tel qu'un dérivé de 40 cellulose, un dextran réticulé, un gel d'agarose ou le Sépharose-4B, ou bien --f-4 - 2597344 un support à base de dérivés acryliques tel que le Trisacryl commercialisé par la société IBF (Industrie Biologique Francaise). La glycoprotéine peut être fixée sur le support en utilisant par exemple un support activé au CNBr. 0 5 Le support peut être également un support de silice poreuse recouverte de DEAE dextran réticulé. On peut utiliser par exemple le Sphérosil recouvert de DEAE dextran. Le tampon carbonate utilisé dans le procédé de l'invention est de préférence un tampon ayant une molarité de 0,025H à 0,5M et un pH 8,3 à 11,6. 10 Après élution, la toxine pertussis peut être par exemple précipitée par le sulfate d'ammonium à 50-80Z de saturation, ou subir directement une étape de détoxification. La toxine ainsi purifiée peut être conservée sous la forme d'un précipité au sulfate d'ammonium ou lyophilisée. Le précipité ou le lyophilisat 15 peut être remis en solution dans un tampon carbonate de molarité supérieure à mM pH 8,3-11,6 qui peut contenir un détergent tel que le Tween 80 à une concentration finale de l'ordre de 0,05-0,5%, préférentiellement un tampon carbonate 100mM pH 9,6 contenant 0,05% de Tween 80 (appelé ci-après tampon CTW>. Afin d'éliminer le sulfate d'ammonium résiduel ou le support de lyophilisation, la solution est mise en dialyse contre plusieurs volumes du même tampon, à température de 230 C, pendant une durée comprise entre 4 et 72 heures. La composition du tampon permettant une solubilisation totale, la solution peut être filtrée sur une membrane de porosité 0,22pm. Cela présente l'avantage de pouvoir procéder aux étapes de détoxification en milieu stérile et à la réalisation d'expérimentations chimiques ou biologiques dont la mise en oeuvre nécessite ou est facilitée par une solubilisation complète du principe actif. La détoxification éventuelle de la toxine pertussis est effectuée de 30 façon semblable à celle utilisée pour les toxines en général. Selon un autre aspect de la présente invention, le procédé de détoxification est effectué dans un tampon carbonate tel que défini précédemment contenant de préférence un tensio-actif, ce qui favorise à la fois la solubilisation de la toxine et son maintien en solution au cours de la réaction de détoxification. Le -35 rendement de l'étape de détoxification est ainsi proche de 100%. Les agents détoxifiants utilisés sont par exemple le formol ou le glutaraldéhyde. Après la détoxification, qui peut être effectuée par exemple à une température de 4-40 C, la solution renfermant l'anatoxine peut être dialysée contre le tampon CTW afin d'éliminer toutes traces de l'agent détoxifiant. 40 L'anatoxine ainsi obtenue demeure en solution, elle peut être filtrée sur une - 5 - 2597344 membrane stérilisante de porosité 0,22pm, et elle est prête à être incluse dans une préparation vaccinale. Comme indiqué ci-dessus, le tampon carbonate décrit dans la présente invention permet de plus la solubilisation complète d'une autre protéine isolée des surnageants de culture des bactéries du genre Bordetella: le FHA. L'utilisation de ce tampon dans l'étape de solubilisation du F-HA présente les avantages décrits dans le cas de la toxine pertussis, c'està-dire notamment de pouvoir procéder à une étape de filtration stérilisante sur membrane 0,22pm sans perte de principe actif. Sous cette forme le F-HA peut être directement 10 inclus dans une préparation vaccinale. Par exemple, le F-HA conservé sous la forme d'un précipité au sulfate d'ammonium est remis en solution selon la technique précédemment décrite pour la toxine pertussis. Le précipité est centrifugé, repris par le tampon CTW et dialysé à température ambiante ou à 4-8 C pendant 4 à 72 heures. 15 Le tampon CTW permet la solubilisation complète du F-HA. L'invention a également pour objet un vaccin anticoquelucheux acellulaire, caractérisé par le fait qu'il contient au moins un principe actif choisi parmi l'anatoxine pertussis et le F-HA, le ou lesdits principes actifs étant présent(s) en solution dans un tampon carbonate tel que décrit 20 ci-dessus, en particulier dans un tampon carbonate contenant un agent tensio-actif tel que le tampon CTW. L'anatoxine pertussis et le F-HA en solution dans le tampon carbonate peuvent être directement inclus dans les préparations vaccinales. Celles-ci peuvent contenir soit l'anatoxine seule, soit un mélange d'anatoxine 25 et de F-HA dans les proportions désirées. Afin de corriger le pH final du vaccin à une valeur comprise entre 7 et 8, un certain volume d'eau physiologique tamponnée (tampon PBS) et acidifiée à l'aide d'une solution d'acide concentré est ajouté. Le volume ajouté est fonction du volume et de la molarité du tampon carbonate présent dans la préparation. La concentration en 30 principe(s) actif(s) est alors ajustée à la valeur désirée par addition du volume nécessaire de tampon PBS. A ce stade peuvent être ajoutés au mélange d'autres antigènes (antigènes diphtérique, tétanique, polio, hémophilus, etc...) un agent de conservation tel le merthiolate ou le phénoxyéthanol, et un adjuvant tel qu'un gel d'alumine ou de phosphate de calcium. 35 Les exemples suivants illustrent l'invention sans toutefois la limiter. -6- 2597344 EXEMPLE 1 Purification de toxine pertussis par chromatographie d'affinité. a) Adsorption de la toxine pertusis sur le support d'affinité Une fraction enrichie en toxine pertussis obtenue après centrifugation et concentration d'une suspension bactérienne de Bordetella pertussis phase I, cultivée en fermenteur de 30 litres est passée sur une colonne de 4 cm de diamètre contenant 120ml de support de chromatographie Sphépharose 4B couplé à l'asialofétuine, avec un débit de 6 ml/cm2/heure. Le Sépharose 4-B a été couplé à l'asialofétuine de la façon 10 suivante g de Sépharose-4B activé au CNBr (Pharmacia) sont mis à gonfler dans 6 litres de HCl lmM pendant 15 minutes environ. Le gel est ensuite lavé 3 fois par 6 litres de HCl lmM. 400 ml d'une solution contenant lmg/ml d'asialofétuine, NaHCO3 0,1 M et NaCl 0,5 M sont ajoutés au gel. Le mélange est laissé à réagir à + 4 C pendant une nuit sous agitation douce. 125ml d'une solution d'éthanolamine 5 M pH 8,0 sont ajoutés au mélange. Après 4 heures d'incubation à température ambiante, le gel est lavé successivement par 500ml de tampon acétate de sodium 0,1 M pH 4,0 contenant NaCl 1 M puis par 500ml de tampon Tris-HC1 5OmM pH 7,5 contenant,20 NaCl 1 M. Ce cycle de lavage est répété trois fois. Le gel est ensuite lavé trois fois par 500ml de tampon Tris-HCI 50MH pH 7, 5 en présence d'un conservateur tel le merthiolate à une concentration de 1/10 000 (p/v). L'asialofétuine utilisée comme ligand dans la chromatographie 25 d'affinité a été obtenue de la façon suivante Une solution aqueuse de fétuine (fétuine type III, Sigma) est hydrolysée par H2SO4 0,05N pendant 1 heure à 80 C. Après hydrolyse, la solution est dialysée contre plusieurs bains d'eau distillée pendant 24 heures à + 4 C afin d'éliminer les acides sialiques libres. La solution d'asialofétuine peut ître concentrée par ultrafiltration à l'aide d'un système équipé de membranes dont le seuil de coupure est égal à 10 000. L'élimination des acides sialiques est contrlée par un dosage colorimétrique spécifique des acides sialiques sur la protéine après et avant hydrolyse. b) Elution de la toxine pertussis Le gel est lavé avec deux volumes de colonne de tampon Tris-HCl 50mM pK 7,5, c'est-à-dire jusqu'à disparition complète de l'absorption UV à 278 nm, puis avec un volume de colonne de tampon Tris-HC1 50mM pH 7,5 contenant NaCl 1 M. La toxine pertussis est éluée avec 400 ml de tampon carbonate 100 mn 40 pH 9,6. - 7 - 2597344 Le tampon carbonate est préparé comme suit: On ajoute à 500ml d'une solution de NaHCO3 0,1 M une solution de Na2CO3 0,1 M, jusqu'à un pH final de 9,6; il faut ajouter environ 250ml de la solution de Na2CO3. Le tampon carbonate ainsi obtenu est filtré sur une membrane de porosité 0,22pm et conservé à +4 C. La densité optique et l'activité hémagglutinante des fractions collectées en sortie de colonne sont mesurées. Les fractions contenant le principe actif, c'est-à-dire celles 10 possédant une forte activité hémagglutinante non inhibée par le cholestérol, sont réunies. La toxine pertussis est ensuite précipitée par le sulfate d'ammonium à une concentration finale correspondant à 70% de la saturation. La toxine pertussis ainsi purifiée induit une forte lymphocytose et 15 sensibilise les souris CFW à l'histamine à la dose de 0,04 pg/souris. La capacité de la toxine d'induire la formation de clusters sur des cellules CHO est caractérisée par une activité spécifique de l'ordre de 65 000 à 260 000 CPU/pg. Les résultats de contrôles physico-chimiques et d'activités biologiques (dosages colorimétriques des éventuels contaminants, ADN, ARN, sucre; dosage du taux d'endotoxine, électrophorèse en milieu SDS ou en milieu acide, etc..) sont en faveur d'une préparation finale homogène renfermant un principe actif hautement purifié. Les analyses de la teneur en toxine pertussis dans le surnageant de 25 culture initial et dans le précipité final indiquent un rendement de purification supérieur à 90%. EXEMPLE 2 Etude comparative de la dissolution suivie d'une filtration stérilisante de la toxine pertussis dans différents tampons. 1,2ml d'une suspension de toxine pertussis sous forme d'un précipité au sulfate d'ammonium à 2,6mg/ml sont prélevés et centrifugés 10 minutes à 000 x g. Le surnageant est éliminé, le culot est repris par 4ml de tampon CTW et dialysé contre ce même tampon. La solution de toxine est filtrée sur une membrane de porosité 0,22mm. La concentration en protéine de la solution 35 avant et après filtration est déterminée par un dosage selon la méthode de Lowry et les résultats sont exprimés soit en rendement de filtration: (concentration en toxine après filtration/concentration en toxine avant filtration) x 100, soit en pourcentage relatif calculé par rapport au rendement de filtration dans le tampon CTW auquel on attribue arbitrairement 40 le rendement de 100%. Les résultats sont présentés dans le tableau ci-après. - 8 - 2597344 TABLEAU I Etude comparative des rendements de filtration de toxine pertussis dans différents tampons. Rendement de % relatif Tampon filtration par rapport % au tampon CTW Phosphate de sodium 20mM NaCl 0,5 M pH 7,2 50 53 avec 1% Zwittergent TM 314* Phosphate de sodium 20mM NaCl 0,5 M pH 7,2 avec_ 34 36 ecyclodextrine 3,5.10 M Phosphate de sodium 20mM NaCl 0,5 M pH 7,2 16 17 avec 0,05 % Tween 80 Phosphate de sodium 20 mM NaCl 0,5 M pH 7,2 37 39 avec urée 1 M Citrate 100 mM pH 7,0 25 27 Carbonate 100 mR pH 9,6 73 78 CTW 94 100 - * Marque commerciale pour le N-tétradécyl N,N'-diméthyl-3-ammoniolpropanesulfonate. o -9- 2597344 EXEMPLE 3: Exemple de détoxification de la toxine pertussis. a) Détoxification par le formol 2ml d'une suspension de toxine pertussis sous forme d'un précipité au sulfate d'ammonium à 5mg/ml (soit 10mg de toxine pertussis) sont centrifugés pendant 15 minutes à 10 000 x g. Le surnageant est éliminé et le culot est repris par 10ml de tampon CTW. La solution est dialysée une nuit à + 4 C contre 2 litres de tampon CTW. En sortie de dialyse la solution est filtrée sur une membrane de 10 porosité 0,22pm. Un dosage de protéines selon la méthode de Lowry est effectué sur la solution filtrée et la concentration en protéines est amenée à 0,4mg/ml, par addition de tampon CTW. Aux 23ml de solution de toxine à 0,4mg/ml, on ajoute 1,22ml de lysine 1 M en solution dans le tampon CTW et 0,265ml d'une solution de formol à 37%. On laisse incuber par exemple pendant 15 21 jours à 4 C. Le mélange réactionnel est ensuite dialysé contre le tampon CTW à + 4 C pendant 48 heures afin d'éliminer toute trace de formol. L'anatoxine est ensuite filtrée stérilement sur une membrane de porosité 0,22pm. Sous cette forme l'anatoxine pertussis peut être incorporée dans une préparation vaccinale. b) Détoxification par le glutaraldéhyde. ml d'une solution de toxine pertussis à 500pg/ml dans le tampon CTW sont préparés comme précédemment décrit. 5ml de glutaraldéhyde à 0,10% dans le tampon CTW sont ajoutés à la solution de toxine. La détoxification peut être conduite à différentes températures, 25 de + 4 C à 40 C; le temps d'incubation de la toxine en présence de glutaraldéhyde est fonction de la température. Le mélange peut être incubé pendant 48 heures à 4 C par exemple. Après incubation, 180pl de lysine 1 M en solution dans le tampon CTW sont ajoutés au mélange et la solution est dialysée pendant 48 heures à 4 C 3Q contre le tampon CTW. Après dialyse, l'anatoxine pertussis est filtrée sur une membrane de porosité 0,22mm. Sous cette forme, elle peut être incluse dans une préparation vaccinale. EXEMPLE 4: Exemples de solubilisation du F-HA par le tampon carbonate. Le F-HA cité dans ces exemples a été préparé selon la technique décrite dans la publication de SATO Y, COWELL J.L., SATO H., BURSTYN D.G and MANCLARK C.R. "Separation and Purification of the Hemagglutinins from Bordetella pertussis" Infect. and Immun., 1983, 41, 1, 313,320. 40 lt -o 2597344 Le F-HA est conservé sous la forme d'un précipité au sulfate d'amnmonium à 70Z de saturation. a) 25ml d'une suspension de F-HA à 1,2mg/ml sous la forme d'un précipité au sulfate d'ammonium sont centrifugés 20 minutes à 30 000 x g. Le surnageant est éliminé et le culot est repris par 30ml de tampon CTW. La solution est dialysée pendant une nuit à + 4 C contre le tampon CTW. La solution est filtrée sur une membrane de porosité 0,22pm. Le F-HA peut être incorporé sous cette forme dans une préparation vaccinale. b) Une étude comparative des rendements de filtration stérilisante -10 sur une membrane de porosité 0,22pm a été réalisée. 4504l d'une suspension de F-HA précipité au sulfate d'ammonium, à ,88 mg/ml, sont prélevés et centrifugés 10 minutes à 10 OOOxg. Le surnageant est éliminé. Le culot est repris par 3ml de tampon et dialysé contre ce même 15 tampon. La solution de F-HA est filtrée sur une membrane de porosité 0,22pm. La concentration en protéines de la solution avant et après filtration est déterminée par un dosage selon Lowry et les résultats sont exprimés soit en rendements de filtration: (concentration après filtration/concentration avant filtration) x 100, soit en pourcentage relatif calculé par rapport au rendement de filtration dans le tampon CTW auquel on attribue arbitrairement le rendement de 100Z. Les résultats sont présentés dans le tableau II ci-apres. &0 - il - TABLEAU II Etude comparative des rendements de filtration du F-HA mis en solution dans différents tampons. 15 20 25 30 Rendement de % relatif par Tampon filtration rapport au % tampon CTW Phosphate d'ammonium 0,1 M 54 61 pH 4,5 Phosphate d'ammonium 0,1 M 3 3 contenant du NaCl 0,5 M Phosphate d'ammonium 0,1 M 72 8 avec du Tween 80 à 0,05% Phosphate monopotassique 62 70 0,1 M pH 4,4 Phosphate monopotassique2 2 0,1 M contenant NaCl 0,5 M Phosphate monopotassique78 0, 1 M avec du Tween 80 0,05% 88 Tris-HC1 50 mM pH 7,4 58 65 contenant du NaCl 0,5 M CTW 89 100 12 - 2597344 EXEMPLE 5 Préparation d'un vaccin pertussis acellulaire. Un vaccin pertussis acellulaire renfermant les antigènes purifiés anatoxine pertussis et F-HA peut être préparé de la façon suivante: Les deux antigènes en solution dans le tampon CTW sont stérilisés séparément par filtration sur membrane de porosité 0,22 pm et leur concentration déterminée par dosage colorimétrique selon la technique de Lowry par exemple. Afin de préparer un litre de vaccin pertussis acellulaire renfermant 10 50pg/ml de chacun des principes actifs, on mélange stérilement les solutions suivantes: - Solution d'anatoxine pertussis à 0,38mg/ml dans le tampon CTW..................................... 132 ml - Solution de F-HA à 1,lmg/ml dans le tampon CTW......... 46 ml - Eau physiologique tamponnée (PBS) contenant HC1 50mM... 202 ml - Hydroxyde d'aluminium à 10mg d'Al/ml................... 20 ml - Merthiolate 1% PBS (P/V).......... ................... 10 ml - PBS qsp.......................................DTD: ..... 1 1 : P- qs.i Cette préparation vaccinale présente les caractéristiques suivantes: - Anatoxine pertussis............ 50 pg/ml - F-HA........................... 50 pg/ml - Aluminium...................... 200 pg/ml p............................. 7,6 - Osmolalité................DTD: ..... 265 mosm/kg - Merthiolate.................... 1/10.000..DTD: - 13 2597344 REVENDICATIONS 1. Utilisation dans la purification, la solubilisation et/ou la détoxification des antigènes protéiques des bactéries du genre Bordetella, d'un tampon carbonate ayant un pH de 8,3 à 11,6. 2. Utilisation selon la revendication 1, caractérisée par le fait que ledit tampon carbonate est un mélange d'un bicarbonate et d'un carbonate alcalin. 3. Utilisation selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée par le fait que le tampon carbonate a une molarité 10 de 0,025-0,5 M. 4. Utilisation selon l'une quelconque des revendications précédentes, caractérisée par le fait que ledit tampon contient en outre un agent tensio-actif, à une concentration inférieure à 1% en poids. 5. Procédé de purification des antigènes protéiques produits dans 15 les milieux de culture des bactéries du genre Bordetella, caractérisé par le fait que l'on met en contact le surnageant de culture, ou une fraction enrichie en toxine pertussis, avec un support solide de chromatographie, capable de fixer la toxine pertussis, puis que l'on élue la toxine dudit support solide à l'aide d'un tampon carbonate ayant un pH de 8,3 à 11,6 et 20 que, si désiré, on soumet l'éluat à une opération de détoxification. 6. Procédé selon la revendication 5, caractérisé par le fait que le tampon carbonate a une molarité de 0,025M à 0,5M. 7. Procédé de solubilisation d'antigènes protéiques produits dans les milieux de culture des bactéries du genre Bordetella, caractérisé par le 25 fait que l'on dissout lesdits antigènes, sous forme d'un précipité ou d'un lyophilisat, dans un tampon carbonate de pH 8,3-11,6 additionné d'un tensio-actif à une concentration inférieure à 1% en poids. 8. Procédé de détoxification de la toxine pertussis, à l'aide d'un agent de détoxification usuel, caractérisé par le fait que l'on effectue la 30 détoxification dans un tampon carbonate tel que défini dans l'une quelconque des revendications 1 à 4. 9. Vaccin anticoquelucheux acellulaire, caractérisé par le fait qu'il contient au moins un principe actif choisi parmi l'anatoxine pertussis et le F-HA, le ou lesdits principes actifs étant présent(s) en solution dans 35 un tampon carbonate tel que défini dans l'une quelconque des revendications 1 à 4.