Brevet FR2585023A1 — publié le 19870123

La présente invention concerne un procédé de sépara- tion de protéines et d'acides gras utilisable dans un pro- cédé de fractionnement industriel de ces protéines en vue d'obtenir des protéines purifiées et concentrées. Le fractionnement des protéines est une opération mise en oeuvre dans diverses industries à des fins de: - valorisation de sous-produits (par exemple traite- ment de sang animal issu des abattoirs; traitement du petit lait et sous-produits de l'industrie laitière). -production de produits à usage thérapeutique: fractionnement du plasma humain. -valorisation de produits d'origine végétale (pois, fèverole, colza,...). En fonction de ces applications et des critères de qualité demandés pour les protéines obtenues, différentes techniques de séparation ont été développées. La précipitation globale des protéines par "coagula- tion" à chaud ne fractionne pas les différentes protéines mais permet, à faible coût, de récupérer un ensemble de produits destinés généralement à l'alimentation animale. L'ultrafiltration permet de séparer les protéines selon leur taille mais elle est essentiellement utilisée pour concentrer et purifier des solutions protéiques. Les méthodes chromatographiques, encore au stade du développement industriel, permettent un fractionnement des protéines, selon leurs affinités, par un adsorbant solide. Très sensible à "l'empoisonnement" des adsorbants, cette technique prometteuse doit encore faire ses preuves sur le plan économique. Les techniques industrielles de fractionnement les plus utilisées reposent sur une précipitation sélective des protéines, en fonction des conditions de pH, de force ioni- que, de la nature et de la concentration des agents précipi- tants. Le procédé le plus répandu dans le monde pour l'ob- tention de protéines plasmatiques est basé sur l'utilisation de l'éthanol (méthode de COHN). Ce procédé présente l'avan- tage d'être bien au point et de limiter les risques de con- tamination bactérienne. I1 est toutefois onéreux du fait du coût de l'éthanoi et de la nécessité de travailler à froid, en dessous de 4 C. D'autres agents précipitants ont été testés, cer- tains à l'échelle industrielle, notamment les acides gras de 6 à 14 atomes de carbone et en particulier l'acide capryli- que, qui présente l'avantage de permettre une séparation à température ambiante et d'être un agent stabilisant de nom- breuses protéines. Toutefois, la récupération des protéines précipitées par l'acide caprylique pose de nombreux problè- mes limitant l'utilisation de cet agent de précipitation. Une redissolution efficace des précipités nécessite des quantités importantes, de sels qui peuvent dénaturer certai- nes protéines et conduit à des solutions diluées en protéi- nes, ce qui nécessite, pour la plupart des applications, une étape de concentration supplémentaire. Un but de la présente invention est de fournir un procédé permettant de récupérer les protéines dans des con- ditions douces, c'est-à-dire sans les altérer, et de recy- cler les acides gras utilisés pour le fractionnement de ces protéines. A cet effet ce procédé de séparation de protéines et d'acides gras utilisés pour le fractionnement de ces pro- téines en vue d'obtenir des protéines purifiées et concen- trées, est caractérisé en ce qu'on fait diffuser l'acide gras à travers un support poreux imbibé d'une solution for- mant une membrane liquide non miscible, d'une part, avec la cha.rge à traiter, constituée d'une solution d'acide gras et de protéines, laquelle est alimentée d'un côté du support poreux imbibé de la membrane liquide, et, d'autre part, avec une phase réceptrice de l'acide gras laquelle est alimentée de l'autre côté du support poreux. Le procédé à membrane liquide supportée suivant l'invention permet de faciliter la dissolution des précipi- tés protéines-acide caprylique même à bas pH (pH 4,5 à 6), d'obtenir directement des solutions finales concentrées en protéines et de récupérer facilement tout ou partie de l'a- cide caprylique en vue d'un recyciage ultérieur. Les soiutions obtenues lors de la mise en oeuvre du procédé selon l'invention sont limpides et les protéines non dénaturées. Des rendements supérieurs à 90 ' en protéines peuvent être obtenus. On décrira ci-après,à titre d'exemple non limitatif, une forme d'exécution de la présente invention,en référence au dessin annexé qui est une vue en coupe schématique d'un appareil à membrane liquide mettant en oeuvre le procédé suivant l'invention. L'appareil mettant en oeuvre le procédé suivant l'invention qui est représenté sur le dessin, est constitué par un module à deux compartiments 1 et 2 séparés par un support poreux 3, lequel est imbibé d'une solution appelée membrane liquide non miscible avec une charge 6 que l'on désire traiter et une phase 4 appelée phase réceptrice. La charge 6 est constituée, par exemple, d'une suspension de précipité d'acide caprylique et de protéines dans une solu- tion en générale aqueuse. La phase réceptrice 4 est destinée à accumuler l'acide caprylique qui a diffusé à travers la membrane liquide: on préférera des phases réceptrices dans lesquelles l'acide caprylique est très fortement soluble (par exemple des solutions aqueuses basiques) ou bien dans lesquelles cet acide peut être fortement complexé par un agent complexant adéquat ou encore peut être précipité sous forme d'un sel insoluble (par exemple sel de calcium, magné- sium, fer, zinc,...). L'acide caprylique doit de plus être facilement récupéré dans la phase réceptrice soit par évapo- ration de celle-ci, soit par filtration soit par tout autre moyen de séparation connu. Les solutions sortant du module sont, d'une part, une solution 5, sortant du compartiment 2, riche en acide caprylique et qui est dirigée vers une unité de récupération de cet acide et, d'autre part, une solution 7, sortant du compartiment 1, riche en protéines solubilisées. Le support poreux 3 doit présenter les caractéristi- ques suivantes: -forte densité de pores (de préférence supérieure à %); faible diamètre de pores (de préférence ne dépassant pas le micron); épaisseur minimale (de préférence inférieure à 200 microns);- -être constitué d'au moins un matériau préférentiel- lement mouillé par la membrane liquide, tel que, par exem- ple, polytétrafluoroéthylène, polyfluorovinylidène, polymè- res hydrophobes pour des membranes liquides organiques, polycarbonate, cellulose ou tout autre polymère hydrophile dans le cas de membranes liquides hydrophiles; -présenter une surface maximale Le procédé suivant l'invention présente l'avantage de permettre la redissolution des protéines dans le milieu même ob elles ont été précipitées, c'est-à-dire sans change- ment de pH ni de salinité. Il permet de recyclage des acides gras et donc un gain important sur le coût du fractionne- ment. Il est de plus facilement automatisable. On donnera ci-dessous, à titre d'illustration, quel- ques exemples non limitatifs de mise en oeuvre du procédé selon l'invention. Exemple 1 Le support poreux est une membrane en polytétrafluo- roéthylène (diamètre de pore 0,5 micron, épaisseur 100 mi- crons). La surface d'échange dans le module utilisé est de 7cm2. La membrane liquide est constituée d'une paraffine fluide à usage médical: (viscosité 14 cP à 200C, indice de réfraction 1,457, point éclair: 1600C). La phase réceptrice est-constituée par 90cm2 d'une solution de soude 0,6 N. La charge à traiter est constituée par 3g d'un pré- cipité d'acide caprylique et d'albumine humaine broyé pen- dant 5 secondes dans un broyeur ménager. La composition pondérale de ce précipité est approximativement: - albumine 33% - acide caprylique 33% humidité 33% Le précipité est maintenu en suspension dans 87cm3 d'une solution d'acétate de sodium 0,06 M à pH 4,90. Les phases des deux compartiments 1 et 2 sont agitées mécanique- ment. La température est maintenue à 20 C. Le tableau 1 ci-dessous donne les évolutions des concentrations dans les deux compartiments 1 et 2 et permet de calculer un flux de production de protéine égal à 55g/m2.h. Le rendement en acide caprylique exrait est d'envi- ron 60% au bout de 6 heures. TABLEAU 1 (-) (: Compartiment 1: Compartiment 2) (:) ( TEMPS (h): 2: 4: 6: 24: 2: 4: 6: 24) (------------- ---:---: -: --: --: -: - -:) ( Albumine:0,38:1,50:3,09:8,02:0,08:0,15: 0,22: 0,28) (g/l):: :: : : :: ) (Acide capry-:: :: ) (lique: :) ( (mmole/l): 9,58:10,3:11,1:50,1:21,2:32, 8: 45,4:54,7) ( pH: 4,88 :5,03:5,23:10: - -) ( t d'albumi-::: ::::) ( ne:: ) ( solubilisé: 4:16:32: 84: -: -: -:) ()àààà Exemple 2: - Le support poreux est ici une membrane en fluorure de polyvinylène (diamètre de pore 0,22 micron,épaisseur 100 microns).Cette membrane est prise en sandwich entre deux supports hydrophiles très poreux lui conférant de bonnes propriétés mécaniques, d'épaisseur voisine de 100 microns chacun.L'ensemble se présente sous la forme d'une cartouche cylindrique contenant 0,7m2 de membrane plissée.La membrane liquide est constituée de paraffine fluide. La solution réceptrice est un lait de magnésie è 59,2g/1 en magnésie, pH ,2; volume 294 cm3. La charge à traiter est constituée de g d'un précipité d'albumine broyé au broyeur ménager, en suspension dans 575 cm3 d'une solution d'acétate de sodium 0,06 N, glucose 1,2 g/l h pH 4,8. La température est mainte- nue h 200C. Le tableau 2 ci-dessous montre que 59 X de l'albu- mine sont dissous au bout de 6h 30 et qu'il n'y a pas de perte en albumine vers la phase réceptrice. On observe peu d'acide caprylique libre en phase réceptrice puisque celui- ci est précipité sous forme de sel de magnésium insoluble. TABLEAU 2 ()àà ( Compartiment 1: Compartiment 2) ()àà ( TEMPS (h): 0: 2,5:4,5: 6,5: O:2,5: 4,5: 6,5) (: -----.........:----:----:...: - -:..) ( Albumine: 0,8: 3,0: 7,6:11,0:0,2:0,2: 0,2: 0,3) ( (g/1): :: ::::: ) (Acide capry-:: ::: ) (lique: :: :::::) ( (mmole/l): 0,6: 6,7:7,3:6,6: 0, 3: 0,3: 0,7: 1,7) ( pH:4,81 :4,76:4,77:4,81:10,10:9,93:10,04: 9,83) (Glucose(g/l):8,93:8,62:8,71:8,67: O: O: 1,7: 1,9) ( % d'albumi-:: : : :x10-3:x10-3) (ne: :: :::::) ( solubilisé: 4:16:41: 59: -: -: -:) à() Exemple 3: Le support poreux est une membrane hydrophile en polycarbonate d'épaisseur 30 microns environ, de diamètre de pore 1 micron. La membrane liquide est une paraffine fluide. La phase réceptrice est une solution de soude de 0,06 N (90cm3). Le compartiment 1 contient une solution d'acétate de sodium 0,06 M, pH 4,9. A bout de cinq minutes les pH se sont égalisés dans les deux phases traduisant la non étanchéité de la membrane liquide et la mauvaise adhérence de la phase huileuse sur ce type de support. Aucune dissolution de précipité n'est ob- servée. Exemple 4: Le support 3 est une membrane en polycarbonate hy- drophobe plissée de 4m2 (diamètre des pores 0,22 micron, épaisseur 30 microns) en sandwhich entre deux supports hy- drophiles poreux. L'ensemble constitue une cartouche cylin- drique.La phase réceptrice est une solution d'acétate de sodium 0,06 M dont le pH est maintenu voisin de 9,5 par ajout de soude. La phase à traiter dans le compartiment 1 est une solution d'acétate de sodium 0,06 M dont le pH est régulé à 6 et dans laquelle sont ajoutés 54g d'un précipité d'albumine et d'acide caprylique. La température est de 20 C. Le tableau 3 ci-dessous montre l'évolution des con- centrations dans les deux compartiments. On ne constate pratiquement pas de fuite en albumine dans le compartiment 2. On observe une concentration importante d'acide capryli- que dans le liquide organique qui sert de membrane. TABLEAU 3 (à) (: Compartiment 1: Compartiment 2) (-- ( TEMPS (h): 1: 2: 3: 20: 1: 2: 3: 20) (: : ----::: :.à:) ( Albumine: 3,1: 9,6:11,7:18,8:0,09:0,10: 0,12: 0,29) ( (g/l):: :::: :) (Acide capry-:: ::::) (lique: ) ( (mmole/1): 34: 41: 47: 51: 0: O: 4: 15) ( % d'albumi-:: :::: ::) ( ne: :: ::: ::) (dissout:15:48: 58: 93: -: -: : -) () Exemple 5: Dans un premier temps on montre que, dans les condi- tions de l'expérience, il n'est pas possible de disssoudre 2g d'un précipité d'albumine et d'acide caprylique dans 50g d'une solution d'acétate de sodium 0,06 M pH 4,9. Pour cela le précipité est vigoureusement dispersé dans la solution d'acétate de sodium pendant 2 heures. Aucune concentration d'albumine soluble ne peut être détectée après ce traitement alors que l'acide caprylique a atteint une concentration d'équilibre voisine de 15 mmole/1. On met alors en contact cette charge avec un système membrane liquide phase réceptrice et on suit l'évolution des concentrations dans la charge (compartiment 1) et dans la phase réceptrice (compartiment 2). Dans cet exemple, le support poreux est une membrane de 9 cm2 en polytétrafluoroéthylène sur trame de polyéthylè- ne haute densité. Le diamètre des pores est de 0,5 micron l'épaisseur d'environ 125 microns. Il est imprégné par 0,2g d'une phase organique constituée d'un aleool gras fluoré de formule C6F13-C2H4-OH. La charge à traiter 6 est constituée de 2g d'un précipité (contenant 45% d'albumine plasmatique; 31% d'acide caprylique; 24% d'eau) mis en suspension dans ( : -: -: -: -:agsTTTqnTos) (:: : : :au ) ú (: - : -TwnqTep %) (Ot'6: -: -: -: 86'8: Hd) Z'0 -: -:: 0: (T/6)) (:': auTmwnqTV) -( 5'Z:T'TZ:'gI:s'oI: 0: (T/aToww)) O0 (: z:: : :anbT ) (:z::X:adeo apTO>) à(......) ( 1 7:: Z:: (4) SdW31) ( à à àà) SZ ( z quawTaedwo3) () ------m---mmm-- m---- - - - -- - - - -- - - (-) ( tZ: 5: 1: 0 0: PsTTTqnTos) (::::: au) OZ :-TFwnqTep %) ( Zç'g:OT'5:Z8': LO'5: ZL': Hd) ( 9ú',:86'0:81'0: 0: 0: (T/6)) (::auTwnqTV) ( 96'5:1'0T:b'ZI: L'úT: ú'5T: (T/aTOWW)) 51 (::::: anbFT) :::-deo apToV) (..........) ( 5: b: ú: Z: 0: (4) Sdw31) (.....................) Ul ( I quawTlaedWo3) () b nV310Vl *sass4d xnap saT SUBp SUOT1dJ:UaaUoo sap suoTInTo^p saT anbTpuT snossap-To t neaTqel al 5 ÀasoonT6 ap T/6 ú luewaTeTITuT %UaTFuoD aTT3 *apnos eT ap Jed 6 9Tn6gi Ise Hd aT Juop auTaXT6 ap aiteTow z'o uoTlnTos aun Ise (60S) b aoT:daagj aseqd B1 'L6'5 Hd 'I/aT m 90'0 wnTpos ap alelpoa,p uodwel un,p 60g úZOS8SZ % de l'acide caprylique introduit se retrouvent dans la phase réceptrice au bout de 5 heures alors que 24% de l'al- bumine ont été dissous dans le compartiment 1. Le flux d'acide caprylique arrivant dans la phase réceptrice est égal à 64 g/h.m2. Après un temps de retard, l'albumine se dissout avec une vitesse voisine de 0,18 g/h dans les conditions de l'expérience. Exemple 6: Le module expérimental, le support 3, la charge à traiter et la phase réceptrice sont identiques à ceux dé- crits dans l'exemple 5. La membrane liquide est constituée par 0,14 g de "tridécanol", un mélange d'alcools ramifiés à 13 carbones. Le tableau 5 ci-dessous donne les résultats obser- Àsdwal aT o9A^ suo;eZJuao -uoo sap uoTnTo^A9,T auuop snossap-To 9 neaTqel al *auooTTTS ap aTTn4,p 6bt'O aed agnIT4suoo Isa apTnbTT auejqwaw el '5 aTdwaxaT suep slTaogp xnaao uos ssuTTvIn aoTaJdaga. aseqd BT la a6 84D eT 'iJoddns aT 'TeluawTJadxa aTnpow al L aTdwax3 (. ....) 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( Z;ua uewiledwos) () (: 8: : 0: 0: nossçp) ç5 (:: ::: au (:z::::-TwnqTe, p) (': -: -: LLZ'ç: OL'#: Hd) ( à(.......) 9 nv31EBI úZOS8sZ 27% de l'acide caprylique sont récupérés dans la phase réceptrice 14% de l'albumine se retrouvent sous forme dissoute dans le compartiment 1 au bout de 5 heures dans ces condi- tions. Exemple 8: Le module expérimental, le support, la charge et la phase réceptrice sont ceux décrits dans l'exemple 5. La membrane liquide est constituée par O,17g d'un alcane fluoré de formule C8F17-C2H5. Les concentrations mesurées sont données dans le tableau 7, ci-dessous. 33% de l'acide initial sont retrouvés en phase réceptrice mais seulement 2% de l'albumine sont solubilisés dans le compartiment 1 o une accumulation d'a- cide plus élevée que pour les exemples précédents peut éga- lement être observée. auTuAT6 ap aaTeTOW z'o uoTInTos aun lsa aoTJldaoea ase4d el apTnTJ auTjJeaJed ap agnllsuoo Isa apTnbTT auesaqwaw el 'SuoJDTw 0t uoJT^ua jnassTedd,p la uoJoTw Z0'o aaod ap a3lQweTp ap aUqTA41oJonTjeJ1alATod ua aueaqwaw aun Isa Tnb ú xnajod laoddns aT luaTluoo Te;uaWTaPdxa aTnpow al :6 aTdwax3 (--) (- -: fnosSTp) au) :-TwnqTep Z) ( T'6 -: 0'6: Hd) (ú1'O: -: : 0 (T/6)) (z: s auTwnqTv) ( 81:9'4T: il: Z'L: 0: (I/eTOWW)) anbFT) (::z:::-Xideo aPTDV) --à à------.----- -- -- -à à- -- --à - -- (............::) ( S: z: ú: Z: 0: (4) SdW31) () ( z luawil-edwoo) () (t,':L'0 U 0: 0: z nossTp) cç" * *65 *a el (9 zç6:[)08 1 ( z z1 (L'T: ':t' L: ' ú13 (z z. au) :-TwnqTe,p A) Z': - Hd) go'0: (T/6)) autwnqT) ú: abTOW)) anbFT) ( _: :::1Jdeo ap[ov) () ( 5: : : Z: 0: (I4) SdW31) (. .. ...) ( luaWT4edwo3) L nV310V1 úZOS8SZ oç0ú 01' _ dont le pH est régulé à 9 (370g). La charge est constituée d'un précipité de transfé- rine plasmatique et d'acide caprylique dispersé dans 1019 d'une solution d'acétate de sodium 0,06 molaire à pli 4,97. Au bout de 20 heures, le précipité s'est entièrement dissous (100% de dissolution) et la concentration de la transférine dans la charge est de 10,7g/l. REVENDICATIONS 1.- Procédé de séparation de protéines et d'acides gras utilisable dans un procédé de fractionnement industriel de ces protéines en vue d'obtenir des protéines purifiées et concentrées, caractérisé en ce que on fait diffuser l'acide gras à travers un support poreux (3) imbibé d'une solution formant une membrane liquide non miscible, d'une part, avec la charge à traiter (6), constituée d'une solution d'acide gras et de protéines, laquelle est alimentée d'un côté (1) du support poreux (3) imbibé de la membrane liquide, et, d'autre part, avec une phase (4) réceptrice de l'acide gras laquelle est alimentée de l'autre côté (2) du support poreux (3). 2.- Procédé suivant la revendication 1 caractérisé en ce qu'on utilise une phase réceptrice (4) dans laquelle l'acide gras est fortement soluble ou il peut être fortement complexé par un agent complexant ou bien encore il peut être précipité sous forme d'un sel insoluble. 3.- Procédé suivant l'une quelconque des revendica- tions précédentes caractérisé en ce que le support poreux (3) a une forte densité de pores, de préférence supérieure à 750, de faible diamètre de pores, de préférence inférieure au micron, et une épaisseur minimale de préférence inférieu- re à 200 microns. 4.- Procédé suivant l'une quelconque des revendica- tions précédentes caractérisé en ce que le support poreux (3) est réalisé en un matériau mouillable par-la membrane liquide, tel que, par exemple, polytétrafluoroéthylène, polyfluorovinylidène, polymères hydrophobes pour des membra- nes liquides organiques, polycarbonate, cellulose ou tout autre polymère hydrophile dans le cas de membranes liquides hydrophiles. 5.- Procédé suivant l'une quelconque des revendica- tions précédentes caractérisé en ce qu'on emploie comme acide gras l'acide caprylique.